JP2023156339A - 機能的なヌクレアーゼのための送達システム - Google Patents

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R Liu David
ズリス,ジョン,アンソニー
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トンプソン,デービッド,ビー.
B Thompson David
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Abstract

【課題】細胞内生体分子をターゲット化するために細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を送達するためのより良好な送達システムを提供する。【解決手段】機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む組成物であって、超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも大きくかつ充分量である正の総電荷を有し、細胞内への透過のために処方される、前記組成物を提供する。前記機能的なエフェクター蛋白質は、限定無しに、転写調節因子(例えば、抑制因子または活性化因子)、リコンビナーゼ、ヌクレアーゼ(例えば、RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼ、例えばCas9蛋白質、TALEヌクレアーゼ、およびジンクフィンガーヌクレアーゼ)、デアミナーゼ、および他の遺伝子改変/編集酵素を包含する。【選択図】なし

Description

関連出願
本願は、2014年8月18日出願のU.S.出願U.S.S.N.14/462,189および2014年8月18日出願のU.S.出願U.S.S.N.14/462,163の米国特許法第365条(c)の下で優先権を主張し、かつ2013年9月6日出願のU.S.仮特許出願U.S.S.N.61/874,746の米国特許法第119条(e)の下で優先権をもまた主張し、そのそれぞれは参照によって本明細書に組み込まれる。
発明の背景
哺乳類細胞内への高分子送達は細胞操作のための魅力的な手法である。なぜなら、それは遺伝子発現の調節およびゲノムの改変を可能とし、翻って研究の新たな道を拓き、低分子による「新薬の開発につながらない」と現行では見られている分子の治療用のターゲット化を可能にするであろうからである。特に、疾患と結びついた遺伝子またはアレルをターゲット化する組み換えヌクレアーゼは、治療薬として大きな可能性を有する。高分子送達の現行の方法は、核酸分子のウイルス送達、核酸または蛋白質の受容体によって媒介される送達、および蛋白質の送達のためのTAT、Arg9、またはペネトラチンなどの細胞透過ペプチドとの蛋白質融合体の使用を包含する。それらの送達システムのそれぞれは特定の応用に利益を提供する。しかしながら、大部分の場合では、有効性、細胞毒性、および調製の容易さに関する問題が残っている。有意な細胞毒性または他の有害な副作用無しに種々の細胞株に高分子(例えば、機能的なエフェクター蛋白質)を有効に送達することができる容易に調製される試薬は、相当の課題のまま残っている。
大部分の蛋白質は哺乳類細胞に自発的には入らず、それゆえに、研究ツールとしてのそれらの使用および治療薬としてのそれらの可能性は天然には限定される。哺乳類細胞内への蛋白質の送達のための技術が、細胞内ターゲットに対処するために最近になって開発された。それらの技術は、脂質に基づく試薬(Zelphati et al., J. Biol. Chem. 276, 35103-35110, 2001)、ナノ粒子(Hasadsri et al., J. Biol. Chem., 2009)、ヴォールトリボヌクレオ蛋白質粒子(Lai et al., ACS Nano 3, 691-699, 2009)、受容体リガンドへの遺伝学的または化学的融合(Gabel et al., J. Cell Biol. 103, 1817-1827, 1986、Rizk et al, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 11011-11015, 2009)、および細胞透過ペプチドへの融合(Wadia et al., Curr. Protein Pept. Sci. 4, 97-104, 2003、Zhou et al., Cell Stem Cell 4, 381-384, 2009)の使用を包含する。恐らく、蛋白質送達のための最も普通の方法は、HIV-1のTat(転写のトランス活性化因子)ペプチドおよびポリアルギニンペプチドを包含する蛋白質形質導入ドメイン(PTD)への遺伝学的融合である。これらのカチオン性PTDは、外来性蛋白質の負に荷電した細胞表面構造との結びつきおよびその後のエンドサイトーシスを促進する。Tatおよびポリアルギニンは両方とも、インビトロおよびインビボの両方の細胞内に種々の高分子を送達するために用いられて来た(Wadia et al., Curr. Protein Pept. Sci. 4, 97-104, 2003、Zhou et al., Cell Stem Cell 4, 381-384, 2009、Myou et al, J. Immunol. 169, 2670-2676, 2002、Bae et al., Clin. Exp. Immunol. 157, 128-138, 2009、Schwarze et al., Science 285, 1569-1572, 1999)。これらの進歩にもかかわらず、細胞内ターゲットは外来性蛋白質を用いて影響を及ぼすことが困難なまま残っている。わずかな成功でさえも、蛋白質が細胞内に機能的に送達される低い効率が原因で、それぞれの形質導入剤の有毒な濃度を要求し得る(Zhou et al., Cell Stem Cell 4, 381-384, 2009、Wang et al., Nat. Biotechnol. 26, 901-908, 2008)。そのため、細胞内生体分子をターゲット化するために細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を入らせるためのより良好な送達システムの必要が残っている。
本開示は、超荷電(supercharged)蛋白質(例えば、正に荷電した超荷電蛋白質)、カチオン性ポリマー、またはカチオン性脂質を用いて、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質(例えば、核酸に結合する部位特異的な蛋白質など)を送達するための新規のシステム、組成物、調製物、キット、および関連する方法を提供する。いくつかの態様において、ヌクレアーゼはTALEヌクレアーゼ、RNAによってプログラミング可能な(RNA-programmable)ヌクレアーゼもしくは操作されたRNAによってプログラミング可能なゲノム編集酵素(例えば、Cas9およびそのバリアントまたは融合体)、またはジンクフィンガーヌクレアーゼである。いくつかの態様において、転写因子はTALE転写活性化因子または抑制因子である。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質はリコンビナーゼである。本明細書により詳細に記載される通り、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)を正に荷電した超荷電蛋白質と融合することまたは結びつけることは、細胞の内部への蛋白質の送達を可能とし、例えば遺伝子発現またはゲノム改変に影響を及ぼす。機能的なエフェクター蛋白質を負に荷電した超荷電蛋白質と融合することまたは結びつけることは、蛋白質がカチオン性脂質またはカチオン性ポリマーと結びつくことを可能とし、これが細胞の内部への蛋白質の強力な送達を提供するということもまた見いだされた。さらに、天然に負に荷電している機能的なエフェクター蛋白質(例えば、VP64転写活性化因子、アニオン性3×FLAGペプチドタグ、およびその融合体)または本来負に荷電している核酸(例えばガイドRNA、「gRNA」)と結びつく機能的なエフェクター蛋白質(例えば、Cas9蛋白質ならびにそのバリアントおよび融合体)は、(例えば、超荷電蛋白質の非存在下において)細胞への送達のためのカチオン性脂質またはカチオン性ポリマーと結びつき得る。
エフェクター蛋白質の送達は細胞外ターゲットについては有効だと判明している一方で、細胞内ターゲットに対処するためのそれらの使用は、大部分の蛋白質が自発的に哺乳類細胞に入ることができないことが原因で、比較的未開発である。外来性蛋白質が細胞内ターゲットにアクセスすることを可能にすることは、化学的トランスフェクション、エレクトロポレーション、またはウイルス送達を通じたそれらのコードDNA配列の送達によって、最も普通には達成される。しかしながら、細胞内への外来性DNAの導入は、ゲノム中への永久的な組み換え、内在性遺伝子の可能性ある破壊、およびコードされる薬剤に対する長期暴露の可能性を生ずる。いくつかの研究または治療応用(ゲノムDNAの一度きりの永久的な改変を実現しようとするゲノム編集応用を包含する)のためには、複製不能な蛋白質薬剤の機能的な送達は、改善された安全性およびより幅広い応用性を提供し得る。さらに、脂質およびポリマーなどのカチオン性化合物を用いる蛋白質の送達は技術的に難しいまま残っており、かつ多くの場合で細胞毒性を誘導する一方で、本明細書において提供される組成物および方法を用いると、ある種の機能的なエフェクター蛋白質(例えば、Cas9蛋白質ならびにそのバリアントおよび融合体、リコンビナーゼ、転写活性化因子/抑制因子など)が細胞に送達され得て、毒性が無いかまたは最小限の毒性が有り、いくつかの場合では、効率の有意な改善と低減されたオフターゲット効果とを有するゲノム改変を媒介するということが、驚くべきことに見いだされた。例えば、例7に記載される通り、カチオン性脂質によるCas9:gRNA複合体の送達は高度に効率的であり(単一の処置から、培養ヒト細胞の80%までの改変)、プラスミドトランスフェクションと比較してより高いゲノム改変特異性をもまた誘導し、典型的には>10倍高いオンターゲット:オフターゲットDNA改変比をヒト細胞においてもたらす。
従って、1つの側面において、超荷電蛋白質が用いられて、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質(例えばヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、Cas9蛋白質(その融合体およびバリアントを包含する)など)を送達する。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、対応する未改変蛋白質と比較してその総表面電荷の増大を示すように操作されている。他の態様において、超荷電蛋白質は、対応する未改変蛋白質と比較してその総表面電荷の減少を示すように操作されている。他の態様において、本開示の文脈で用いられる超荷電蛋白質は、天然に存在する超荷電蛋白質である。超荷電蛋白質は、共有結合的なまたは非共有結合的な相互作用を介して、送達されるべき蛋白質と結びつけられ得る。いずれかの特定の理論によって束縛されることを求めるものではないが、gRNAと結びついたCas9蛋白質、バリアント、または融合蛋白質は正味の負電荷を有し、正に荷電した超荷電蛋白質との結びつきを容易にする。ある種の態様において、超荷電蛋白質と結びついた機能的なエフェクター蛋白質は、カチオン性ポリマーまたはカチオン性脂質とさらに結びついて、細胞内への送達に好適な組成物を形成する。好適な操作されたまたは天然に存在する超荷電蛋白質の例は国際PCT特許出願PCT/US07/70254(2007年6月1日出願、2007年12月13日にWO2007/143574として公開)、国際PCT出願PCT/US09/041984(2009年4月28日出願、2009年11月5日にWO2009/134808として公開)、および国際PCT出願PCT/US10/001250(2010年4月28日出願、2010年11月11日にWO2010/129023として公開)に記載されており、そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。細胞にヌクレアーゼを送達することへの使用のための超荷電蛋白質のさらなる例が本明細書に記載される。好適な機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼおよびRNAによってプログラミング可能なエフェクター蛋白質、例えばCas9蛋白質)の追加の例は、「Engineered Transcription Activator-Like Effector (TALE) Domains and Uses Thereof」と題する2013年8月22日出願のU.S.仮特許出願U.S.S.N.61/868,846、「Cas9 Variants and Uses Thereof」と題する2013年9月6日出願のU.S.仮特許出願U.S.S.N.61/874,609、「Switchable Cas9 Nucleases and Uses Thereof」と題する2013年9月6日出願のU.S.仮特許出願U.S.S.N.61/874,682、「Engineered Transcription Activator-Like Effector (TALE) Domains and Uses Thereof」と題する2014年6月20日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/320,519、「Cas9-FokI Fusion Proteins And Uses Thereof」と題する2014年6月30日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/320,498、「Cas9-Recombinase Fusion Proteins And Uses Thereof」と題する2014年6月30日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/320,467、「Switchable gRNAs Comprising Aptamers」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,329、「mRNA-Sensing Switchable gRNAs」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,340、「Extended DNA-Sensing gRNAs」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,361、「Fusions Of Cas9 Domains And Nucleic Acid-Editing Domains」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/325,815、「Methods For Nucleic Acid Editing」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,109、「Methods For Correcting PI3K Point Mutations」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,140、「Methods For Correcting Presenilin Point Mutations」と題する2014年7月9日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,269、「Methods For Correcting α-Antitrypsin Point Mutations」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,290、「Methods For Correcting Von Willebrand Factor Point Mutations」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,318、「Methods For Correcting Caspase-9 Point Mutations」と題する2014年7月8日出願のU.S.非仮出願U.S.S.N.14/326,303、および「Cas9 Proteins Including Ligand-Dependent Inteins」と題するU.S.仮出願U.S.S.N.62/030,943に記載されており、そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。
いくつかの態様において、操作されたまたは天然に存在する超荷電蛋白質は正に荷電する。他の態様(例えば、カチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーを用いるある種のエフェクター蛋白質の送達が関わるもの)において、超荷電蛋白質は負に荷電する。ある種の態様において、超正荷電または超負荷電蛋白質はエフェクター蛋白質と非共有結合的に結びつけられる。その代わりに、超正荷電または超負荷電蛋白質はエフェクター蛋白質に共有結合し得る。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質は超荷電蛋白質に融合する。ある種の態様において、もたらされる融合蛋白質は、超荷電蛋白質とエフェクター蛋白質との間にリンカー(例えば切断可能なリンカー)を含む。
本開示のいくつかの側面は、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)と結びついた超荷電蛋白質を含む組成物を提供する。いくつかの態様において、組成物はカチオン性脂質をさらに含む。いくつかの態様において、組成物はカチオン性ポリマーをさらに含む。いくつかの態様において、組成物は、緩衝液または賦形剤をさらに含む。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、その対応する未改変蛋白質よりも大きくかつ充分な量である正の総電荷を有し、細胞への送達および透過のために処方される。他の態様(例えばカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーを用いるある種のエフェクター蛋白質の送達が関わるもの)において、超荷電蛋白質は、その対応する未改変蛋白質よりも大きい負の総電荷を有する。いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質は部位特異的な酵素、例えばヌクレアーゼ、Cas9蛋白質、リコンビナーゼなどである。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は野生型Cas9蛋白質、Cas9ニッカーゼであるか、またはヌクレアーゼ不活性型(dCas9)蛋白質を含む。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はdCas9を含む融合蛋白質である。いくつかの態様において、融合蛋白質は、転写活性化因子(例えばVP64)、転写抑制因子(例えば、KRAB、SID)、ヌクレアーゼドメイン(例えば、FokI)、リコンビナーゼドメイン(例えば、Hin、Gin、またはTn3)、デアミナーゼ(例えば、シチジンデアミナーゼまたはアデノシンデアミナーゼ)、またはエピジェネティック修飾因子ドメイン(例えば、TET1)を含む。ヌクレアーゼが関わるいくつかの態様において、ヌクレアーゼはTALEヌクレアーゼ、Cas9ヌクレアーゼ、Cas9ニッカーゼ、またはジンクフィンガーヌクレアーゼである。いくつかの態様において、ヌクレアーゼは核酸配列に特異的に結合して切断する。いくつかの態様において、ターゲット化される核酸配列は、治療ターゲットである遺伝子(例えば、疾患の処置において不活性化することが望ましい遺伝子)の配列である。いくつかの態様において、ターゲット化される核酸配列はPRDM16、PPARγ、VEGF-A、Oct-4、PI3K、プレセニリン、α-アンチトリプシン、フォン・ヴィレブランド因子、またはカスパーゼ-9遺伝子配列である。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質は転写因子である。いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質はTALE転写活性化因子または抑制因子である。いくつかの態様において、転写因子、転写活性化因子、または転写抑制因子は遺伝子に特異的に結合し、活性化または抑制する。いくつかの態様において、遺伝子は治療ターゲットである。いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質はTALEエフェクターである。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は機能的なエフェクター蛋白質に共有結合し、それゆえに融合蛋白質を形成する。いくつかの態様において、超荷電蛋白質はリンカーを介して機能的なエフェクター蛋白質と結びつく。いくつかの態様において、リンカーは切断可能なリンカーである。いくつかの態様において、リンカーは、UVによって切断可能なリンカーまたはリソソーム酵素によって切断されるリンカーである。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は機能的なエフェクター蛋白質と非共有結合的に結びつき、それゆえに複合体を形成する。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は正味の正の総電荷を有する。他の態様において、超荷電蛋白質は正味の負の総電荷を有し、蛋白質(単数または複数)はカチオン性脂質と結びつく。他の態様において、超荷電蛋白質は正味の負の総電荷を有し、蛋白質(単数または複数)はカチオン性ポリマーと結びつく。いくつかの態様において、正味の正の総電荷は約+5~約+40であるか、または正味の負の総電荷は約-5~約-50である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて多く正に荷電するかまたは負に荷電する。いくつかの態様において、対応する未改変蛋白質は天然に存在する蛋白質である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて少なくとも+5多く正にまたは少なくとも-5多く負に荷電する。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は蛍光蛋白質である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は緑色蛍光蛋白質(GFP)である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は超正荷電GFPである。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は超正荷電GFP(+36GFP)であり、配列:
GGASKGERLFRGKVPILVELKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFEGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRNHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGIKHGRDERYK(配列番号1)
の少なくとも20個の連続したアミノ酸残基を含む。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、配列番号1に示されているアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、配列番号1に示されているアミノ酸配列からなる。いくつかの態様において、組成物は医薬組成物である。いくつかの態様において、組成物は薬学的に許容可能な賦形剤を含む。いくつかの態様において、組成物は対象への投与のために処方され、対象の少なくとも1つの細胞への送達に有効な量で超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質を含む。いくつかの態様において、組成物は、対象への投与後に測定可能な治療効果を誘導するための有効な量で、超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質を含む。
本開示のいくつかの側面は、gRNAおよびカチオン性脂質と結びついたCas9蛋白質を含む組成物を提供する。Cas9蛋白質がgRNAと結びついたときに、複合体はカチオン性脂質によって封入されて細胞に有効に送達され得るということが、驚くべきことに見いだされた。これは、超荷電蛋白質有りまたは無しで成就され得る。いくつかの態様において、組成物は、負の超荷電蛋白質(例えば超負荷電GFP)およびカチオン性脂質と結びついたCas9蛋白質を含み、これもまた細胞への成功した送達を可能にする。いくつかの態様において、組成物は、細胞の集団に送達されたときに低い毒性を示す。例えば、細胞の少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%が、組成物の投与後に生存可能である。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は野生型Cas9蛋白質、Cas9ニッカーゼであるか、またはヌクレアーゼ不活性型(dCas9)蛋白質を含む。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はdCas9を含む融合蛋白質である。いくつかの態様において、融合蛋白質は、転写活性化因子(例えば、VP64)、転写抑制因子(例えばKRAB、SID)、ヌクレアーゼドメイン(例えば、FokI)、リコンビナーゼドメイン(例えばHin、Gin、またはTn3)、デアミナーゼ(例えば、シチジンデアミナーゼまたはアデノシンデアミナーゼ)、またはエピジェネティック修飾因子ドメイン(例えばTET1)を含む。
本開示の他の側面は、gRNAおよびカチオン性ポリマーと結びついたCas9蛋白質を含む組成物を提供する。カチオン性脂質と同じく、Cas9蛋白質がgRNAと結びついたときには、複合体はカチオン性ポリマーと結びついて細胞に有効に送達され得る。これは、超荷電蛋白質有りまたは無しで成就され得る。いくつかの態様において、組成物は、負の超荷電蛋白質(例えば、超負荷電GFP)およびカチオン性ポリマーと結びついたCas9蛋白質を含み、これもまた細胞への成功した送達を可能にする。いくつかの態様において、組成物は、細胞の集団に送達されたときに低い毒性を示す。例えば細胞の少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%が、組成物の投与後に生存可能である。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は野生型Cas9蛋白質、Cas9ニッカーゼであるか、またはヌクレアーゼ不活性型(dCas9)蛋白質を含む。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はdCas9を含む融合蛋白質である。いくつかの態様において、融合蛋白質は、転写活性化因子(例えば、VP64)、転写抑制因子(例えば、KRAB、SID)、ヌクレアーゼドメイン(例えば、FokI)、リコンビナーゼドメイン(例えば、Hin、Gin、またはTn3)、デアミナーゼ(例えば、シチジンデアミナーゼまたはアデノシンデアミナーゼ)、またはエピジェネティック修飾因子ドメイン(例えば、LSD1、TET1)を含む。
本開示のいくつかの側面は、対象に本明細書において提供される組成物を投与するための方法を提供する。いくつかの態様において、方法は、対象に本明細書に記載される組成物を投与することを含む。いくつかの態様において、対象は、疾患、障害、または状態の1つもしくは2つ以上の症状を患いやすいか、それを患っているか、またはそれを示す。いくつかの態様において、組成物は、投与の結果として少なくとも1つの兆候または症状が回復するための充分な量および好適な条件で、対象に投与される。いくつかの態様において、投与するステップは、機能的なエフェクター蛋白質が対象の細胞に透過するために充分な条件で実施される。いくつかの態様において、疾患、障害、または状態は、mRNA、蛋白質、またはその組み合わせの異常に高まったレベルと結びついている。いくつかの態様において、組成物は、ゲノム配列(例えば、正常なまたは病原性のアレル、疾患の患いやすさまたは始まりもしくは進行と結びついた遺伝子、病原性のRNAまたは蛋白質をコードする遺伝子、あるいは、疾患細胞または組織において異常に高いレベルで発現されるRNAまたは蛋白質をコードする遺伝子)に特異的に結合して切断するヌクレアーゼを含む。いくつかの態様において、投与するステップは、経口、静脈内、筋内、動脈内、皮下、脳室内、局所、吸入、および粘膜送達からなる群から選択される投与経路を含む。
本開示のいくつかの側面は、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を導入するための方法を提供する。いくつかの態様において、方法は、機能的なエフェクター蛋白質が細胞に入るための好適な条件で、本明細書に記載される超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質を含む組成物と細胞を接触させることを含み、それによって細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を導入する。いくつかの態様において、方法は、Cas9蛋白質が細胞に入るための好適な条件で、Cas9蛋白質とカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーとを含む組成物と細胞を接触させることを含み、それによって細胞内にCas9蛋白質を導入する。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は細胞の核に入る。例えば、Cas9蛋白質は、蛋白質中に核局在シグナル(NLS)を包含することによって核に導かれる。いくつかの態様において、方法は、機能的なエフェクター蛋白質(例えばCas9を包含する)が細胞に透過したことを確認することをさらに含む。いくつかの態様において、細胞は対象内にあり、接触はインビボでなされる。いくつかの態様において、対象は、遺伝子の異常な発現レベルと結びついた疾患を有するかまたは発症するリスクがあると診断され、機能的なエフェクター蛋白質(例えばCas9を包含する)が遺伝子の発現レベルを調節する。いくつかの態様において、方法は、遺伝子の発現のレベルの変化を検出することまたは対象の治療応答を検出することをさらに含む。いくつかの態様において、細胞は体細胞である。いくつかの態様において、細胞は、望まれる細胞運命への細胞のプログラミングを誘導するための充分な量、時間、および条件で組成物または医薬組成物と接触させられる。いくつかの態様において、方法は、細胞補充治療手法にプログラミングされた細胞を用いることをさらに含む。いくつかの態様において、細胞は、疾患と結びついたゲノムアレルを持っている細胞であり、機能的なエフェクター蛋白質はアレルを特異的にターゲット化する。いくつかの態様において、細胞はエクスビボで接触させられ、機能的なエフェクター蛋白質による望まれないアレルの成功したターゲット化後に対象に再投与される。
本開示のいくつかの側面は、本明細書に記載される組成物(例えば、機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む組成物)を含むキットを提供する。いくつかの態様において、キットは、Cas9蛋白質および超荷電蛋白質を含む。いくつかの態様において、キットは、Cas9蛋白質およびカチオン性脂質を含む。いくつかの態様において、キットは、Cas9蛋白質およびカチオン性ポリマーを含む。いくつかの態様において、キットは、キット中に包含される構成物を用いるための取扱説明書をさらに含む。
本発明のこれらおよび他の側面および態様、さらには様々な利点および有用性は、図面および本発明の詳細な記載に関してより明らかになるであろう。
定義
本明細書および特許請求の範囲において用いられる場合、単数形「a」、「an」、および「the」は、文脈が明確に別様に示さない限り、単数および複数の参照を包含する。それゆえに、例えば「薬剤」の参照は単一の薬剤および複数の薬剤を包含する。
用語「と結びつく」は、2つまたは3つ以上の部分(例えば、蛋白質または蛋白質ドメイン)の文脈で本明細書において用いられる場合、部分が、直接的にまたは連結剤として働く1つもしくは2つ以上の追加の部分を介して互いに物理的に結びつきまたは繋がって、充分に安定な構造を形成し、その結果、部分は、構造が用いられる条件で(例えば生理条件で)物理的に結びついたまま残るという事実を言う。超荷電蛋白質は、非共有結合的な相互作用(例えば、静電気的相互作用)を介して機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)と結びつき得る。ある種の態様において、超荷電蛋白質は静電気的相互作用を介して機能的なエフェクター蛋白質と結びついて、複合体を形成し得る。いくつかの態様において、より弱い相互作用の充分な数は、部分が種々の異なる条件で物理的に結びついたまま残っているために充分な安定性を提供し得る。ある種の態様において、超荷電蛋白質は、共有結合(例えば、アミド結合)を介して機能的なエフェクター蛋白質と結びつく。いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質は、ペプチド結合によって直接的にまたはリンカーを介して間接的に超荷電蛋白質と結びつく。
用語「Cas9」または「Cas9ヌクレアーゼ」は、Cas9蛋白質またはその断片を含む、RNAによってガイドされるヌクレアーゼ(例えば、Cas9の活性もしくは不活性なDNA切断ドメインまたは部分的に不活性なDNA切断ドメイン(例えばCas9「ニッカーゼ」)および/あるいはCas9のgRNA結合ドメインを含む蛋白質)を言う。いくつかの態様において、用語「Cas9」はCas9またはその断片を含む融合蛋白質を言う。
いくつかの態様において、Cas9は、Corynebacterium ulcerans(NCBIのRef:NC_015683.1、NC_017317.1)、Corynebacterium diphtheria(NCBIのRef:NC_016782.1、NC_016786.1)、Spiroplasma syrphidicola(NCBIのRef:NC_021284.1)、Prevotella intermedia(NCBIのRef:NC_017861.1)、Spiroplasma taiwanense(NCBIのRef:NC_021846.1)、Streptococcus iniae(NCBIのRef:NC_021314.1)、Belliella baltica(NCBIのRef:NC_018010.1)、Psychroflexus torquisl(NCBIのRef:NC_018721.1)、Streptococcus thermophilus(NCBIのRef:YP_820832.1)、Listeria innocua(NCBIのRef:NP_472073.1)、Campylobacter jejuni(NCBIのRef:YP_002344900.1)、またはNeisseria meningitidis(NCBIのRef:YP_002342100.1)からのCas9を言う。
用語「カチオン性脂質」は、生理pHにおいてカチオン性の(または正の)電荷を有する脂質を言う。カチオン性脂質は種々の形態をとり得、リポソームまたはミセルを包含するが、これに限定されない。本開示のある種の側面に有用なカチオン性脂質は当分野において公知であり、一般的に極性および非極性ドメインを両方含み、ポリアニオン(例えば核酸分子または負の超荷電蛋白質)に結合し、典型的には細胞内への核酸の送達を容易にすることが公知である。有用なカチオン性脂質の例は、ポリエチレンイミン、ポリアミドアミン(PAMAM)スターバーストデンドリマー、Lipofectin(DOTMAおよびDOPEの組み合わせ)、Lipofectase、LIPOFECTAMINE(登録商標)(例えば、LIPOFECTAMINE(登録商標)2000、LIPOFECTAMINE(登録商標)3000、LIPOFECTAMINE(登録商標)RNAiMAX、LIPOFECTAMINE(登録商標)LTX)、SAINT-RED(Synvolux Therapeutics, Groningen Netherlands)、DOPE、Cytofectin(Gilead Sciences, Foster City, Calif.)、およびEufectin(JBL, San Luis Obispo, Calif.)を包含する。例示的なカチオン性リポソームは、N-[1-(2,3-ジオレオールオキシ(dioleoloxy))-プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウムクロリド(DOTMA)、N-[1-(2,3-ジオレオールオキシ(dioleoloxy))-プロピル]-Ν,Ν,Ν-トリメチルアンモニウムメチルサルフェート(DOTAP)、3β-[Ν-(Ν’,Ν’-ジメチルアミノエタン)カルバモイル]コレステロール(DC-Chol)、2,3,-ジオレイルオキシ-N-[2(スペルミンカルボキサミド)エチル]-N,N-ジメチル-1-プロパンアミニウムトリフルオロ酢酸(DOSPA)、1,2-ジミリスチルオキシプロピル-3-ジメチル-ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド、およびジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド(DDAB)から作られ得る。カチオン性脂質は、細胞に核酸分子を送達するために当分野において用いられて来た(例えば、U.S.Pat.No.5,855,910、5,851,548、5,830,430、5,780,053、5,767,099、8,569,256、8,691,750、8,748,667、8,758,810、8,759,104、8,771,728、Lewis et al. 1996. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:3176、Hope et al. 1998. Molecular Membrane Biology 15: 1参照)。加えて、他の脂質組成物もまた当分野において公知であり、例えばU.S.Pat.No.4,235,871、U.S.Pat.No.4,501,728、4,837,028、4,737,323において教示されるものを包含する。
用語「カチオン性ポリマー」は、本明細書において用いられる場合、正味の正電荷を有するポリマーを言う。カチオン性ポリマーは当分野において周知であり、Samal et al., Cationic polymers and their therapeutic potential. Chem Soc Rev. 2012 Nov 7;41(21):7147-94、公開U.S.特許出願U.S.2014/0141487A1、U.S.2014/0141094A1、U.S.2014/0044793A1、U.S.2014/0018404A1、U.S.2014/0005269A1、およびU.S.2013/0344117A1、ならびにU.S.Pat.No.8,709,466、8,728,526、8,759,103、および8,790,664に記載されているものを包含し、それぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。例示的なカチオン性ポリマーは、ポリアリルアミン(PAH)、ポリエチレンイミン(PEI)、ポリ(L-リシン)(PLL)、ポリ(L-アルギニン)(PLA)、ポリビニルアミンホモまたはコポリマー、ポリ(ビニルベンジル-トリ-C-C-アルキルアンモニウム塩)、脂肪族または芳香脂肪族ジハライドおよび脂肪族N,N,N’,N’-テトラ-C-C-アルキル-アルキレンジアミンのポリマー、ポリ(ビニルピリジン)またはポリ(ビニルピリジニウム塩)、ポリ(N,N-ジアリル-N,N-ジ-C-C-アルキル-アンモニウムハライド)、四級化ジ-C-C-アルキル-アミノエチルアクリレートまたはメタクリレートのホモまたはコポリマー、POLYQUAD(商標)、ポリアミノアミド、および同類を包含するが、これに限定されない。
用語「デアミナーゼ」は、脱アミノ反応を触媒する酵素を言う。いくつかの態様において、デアミナーゼはシチジンデアミナーゼであり、シチジンまたはデオキシシチジンからそれぞれウラシルまたはデオキシウラシルへの加水分解的な脱アミノを触媒する。
用語「有効量」は、本明細書において用いられる場合、望まれる生体応答を惹起するために充分である生物活性剤の量を言う。例えば、いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の有効量は、検出可能な効果(例えば、ターゲット部位の切断、ターゲット部位の改変、遺伝子発現の調節など)を誘導するために充分である蛋白質の量を言い得る。かかる効果は好適なアッセイにおいて(例えば、無細胞系アッセイにおいて、またはターゲット細胞、組織、もしくは対象生物において)検出され得る。当業者によって認められるであろう通り、薬剤(例えば機能的なエフェクター蛋白質)の有効量は、例えば、望まれる生体応答、ターゲット化されるべき特定のアレル、ターゲット化されようとするゲノム、ターゲット部位、細胞、または組織、および用いられようとする超荷電蛋白質のようなさまざまな因子に依存して変わり得る。
用語「エフェクター蛋白質」は、細胞内に導入されたときに、細胞の生物学的機能を調節する蛋白質を言う(例えば、細胞内の核酸分子の改変(例えば、切断、脱アミノ、組み換えなど)、または調節(例えば、増大もしくは減少)細胞内の遺伝子の発現もしくは発現レベル)。
用語「操作された」は、本明細書において用いられる場合、ヒトによって設計、生成、調製、合成、および/または製造された蛋白質分子、複合体、物質、または実体を言う。従って、操作された産物は、天然に存在しない産物である。いくつかの態様において、操作された蛋白質または組成物(例えば、ヌクレアーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)などの機能的なエフェクター蛋白質と結びついた操作された超荷電蛋白質)は、特定の要件に合うかまたは特定の望まれる特徴を有するように(例えば、規定の正味電荷を有するように、興味あるターゲット配列に特異的に結合および/もしくは切断または改変するように、特定の最小限もしくは最大限の切断もしくは酵素活性を有するように、および/または特定の安定性を有するように)設計された超荷電蛋白質である。
用語「エピジェネティック修飾因子」は、本明細書において用いられる場合、DNA(例えば染色体DNA)のエピジェネティックな修飾をもたらす酵素活性を有する蛋白質またはその触媒ドメインを言う。エピジェネティックな修飾はDNAメチル化および脱メチル化、ヒストン修飾(メチル化および脱メチル化(例えば、モノ、ジ、およびトリメチル化)、ヒストンアセチル化および脱アセチル化、さらにはヒストンユビキチン化、リン酸化、およびSUMO化を包含する)を包含するが、これに限定されない。
用語「機能的な蛋白質」は、それが特徴づけられる特性および/または活性を示す形態にある蛋白質を言う。
用語「融合蛋白質」は、ペプチド結合を介して互いに結びつきそれゆえに単一のアミノ酸配列を形成する複数の異種蛋白質、蛋白質ドメイン、またはペプチド(例えば、超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質)を含む、蛋白質を言う。ある種の態様において、融合蛋白質は遺伝子によってコードされる。
用語「遺伝子」は、当分野において理解される通りのその意味を有する。用語「遺伝子」が遺伝子制御配列(例えば、プロモーター、エンハンサーなど)および/またはイントロン配列を包含し得るということは当業者によって認められるであろう。遺伝子の定義が、蛋白質をコードせずにむしろ機能性RNA分子(例えば、RNAi薬剤、リボザイム、tRNAなど)をコードする核酸への参照を包含するということは、さらに認められるであろう。明確さの目的のために、本願において用いられる場合、用語「遺伝子」は、蛋白質をコードする核酸の部分を一般的に言うということが注意されるべきである。用語は制御配列を任意で包含し得、これは当業者には文脈から明確であろう。この定義は、蛋白質をコードしない発現単位への用語「遺伝子」の適用を除外することではなく、むしろ大部分の場合で、用語は、本文書において用いられる場合、蛋白質をコードする核酸を言うということを明確にすることを意図されている。
用語「単離された」は、(1)(天然においてか実験の設定においてかにかかわらず)当初生成したときにそれが結びついていた構成物の少なくともいくつかから分離された、ならびに/または(2)ヒトによって生成、調製、合成、および/もしくは製造された、分子、複合体、物質、または実体を言う。単離された物質および/または実体は、それらが当初結びついていた他の構成物の少なくとも約10%、約20%、約30%、約40%、約50%、約60%、約70%、約80%、約90%以上から分離されており得る。いくつかの態様において、単離された薬剤は約80%、約85%、約90%、約91%、約92%、約93%、約94%、約95%、約96%、約97%、約98%、約99%、または約99%よりも純粋である。本明細書において用いられる場合、物質は、他の構成物を実質的に含まない場合に「純粋」である。
用語「リンカー」は、本明細書において用いられる場合、2つの分子または部分(例えば超荷電蛋白質およびヌクレアーゼ)を連結する化学基または分子を言う。典型的には、リンカーは、2つの基、分子、または他の部分の間に配置されるかまたはそれらによってフランキング(脇に接続)され、共有結合を介して互いに繋がり、それゆえに2つを繋ぐ。いくつかの態様において、リンカーは一アミノ酸または複数のアミノ酸(例えば、ペプチドまたは蛋白質)を含む。いくつかの態様において、リンカーは有機分子、基、ポリマー、または化学的部分である。いくつかの態様において、リンカーは切断可能なリンカーである。例えば、リンカーは、切断活性(例えば、UV光または加水分解酵素、例えばリソソームプロテアーゼ)に対する暴露によって切断され得る結合を含む。いくつかの態様において、リンカーはアミノ酸のいずれかのストレッチであり、少なくとも1、少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9、少なくとも10、少なくとも15、少なくとも20、少なくとも25、少なくとも30、少なくとも40、少なくとも50、または51個以上のアミノ酸を有する。いくつかの態様において、ペプチドリンカーはトリペプチドGly-Gly-Serのリピート(反復)を含み、例えば配列(GGS)を含み、nは少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、または11個以上のリピートを表す。いくつかの態様において、リンカーは配列(GGS)(配列番号2)を含む。いくつかの態様において、ペプチドリンカーは16残基「XTEN」リンカーまたはそのバリアントである(例えば、Schellenberger et al. A recombinant polypeptide extends the in vivo half-life of peptides and proteins in a tunable manner. Nat. Biotechnol. 27, 1186-1190 (2009)参照)。いくつかの態様において、XTENリンカーは配列SGSETPGTSESATPES(配列番号3)、SGSETPGTSESA(配列番号4)、またはSGSETPGTSESATPEGGSGGS(配列番号5)を含む。いくつかの態様において、ペプチドリンカーは、VPFLLEPDNINGKTC(配列番号6)、GSAGSAAGSGEF(配列番号7)、SIVAQLSRPDPA(配列番号8)、MKIIEQLPSA(配列番号9)、VRHKLKRVGS(配列番号10)、GHGTGSTGSGSS(配列番号11)、MSRPDPA(配列番号12)、またはGGSM(配列番号13)から選択される1つまたは2つ以上である。
用語「ヌクレアーゼ」は、本明細書において用いられる場合、核酸分子中のヌクレオチド残基を繋ぐホスホジエステル結合を切断することができる薬剤(例えば蛋白質または低分子)を言う。いくつかの態様において、ヌクレアーゼは蛋白質(例えば、核酸分子に結合して、核酸分子中のヌクレオチド残基を繋ぐホスホジエステル結合を切断し得る酵素)である。ヌクレアーゼは、ポリヌクレオチド鎖内でホスホジエステル結合を切断するエンドヌクレアーゼ、またはポリヌクレオチド鎖の末端でホスホジエステル結合を切断するエキソヌクレアーゼであり得る。いくつかの態様において、ヌクレアーゼは部位特異的ヌクレアーゼであり、特異的なヌクレオチド配列中の特異的なホスホジエステル結合を結合および/または切断し、これは本明細書において「認識配列」、「ヌクレアーゼターゲット部位」、または「ターゲット部位」ともまた言われる。いくつかの態様において、ヌクレアーゼは一本鎖ターゲット部位を認識し、一方、他の態様において、ヌクレアーゼは二本鎖ターゲット部位(例えば二本鎖DNAターゲット部位)を認識する。多くの天然に存在するヌクレアーゼ(例えば、多くの天然に存在するDNA制限ヌクレアーゼ)のターゲット部位は当業者に周知である。多くの場合では、DNAヌクレアーゼ(例えばEcoRI、HindIII、またはBamHI)は長さ4~10塩基対のパリンドローム二本鎖DNAターゲット部位を認識し、ターゲット部位内の特異的な位置において2つのDNA鎖のそれぞれを切断する。いくつかのエンドヌクレアーゼは二本鎖核酸ターゲット部位を対称的に切断し、すなわち、両方の鎖を同じ位置で切断して、その結果、末端は塩基対形成したヌクレオチド(本明細書においては平滑末端ともまた言われる)を含む。他のエンドヌクレアーゼは二本鎖核酸ターゲット部位を非対称的に切断し、すなわち各鎖を異なる位置で切断して、その結果、末端は非対合ヌクレオチドを含む。二本鎖DNA分子の末端の非対合ヌクレオチドは「オーバーハング」(例えば、非対合ヌクレオチド(単数または複数)がそれぞれのDNA鎖の5’または3’末端を形成するかどうかに依存して「5’オーバーハング」または「3’オーバーハング」)ともまた言われる。非対合ヌクレオチド(単数または複数)で終わる二本鎖DNA分子末端は粘着末端ともまた言われる。なぜなら、それらは、相補的な非対合ヌクレオチド(単数または複数)を含む他の二本鎖DNA分子末端に「粘着」し得るからである。ヌクレアーゼ蛋白質は、「結合ドメイン」(これは、核酸基質との蛋白質の相互作用を媒介する)と「切断ドメイン」(これは、核酸バックボーン中のホスホジエステル結合の切断を触媒する)とを典型的には含む。いくつかの態様において、ヌクレアーゼ蛋白質は単量体形態で核酸分子に結合して切断し得、一方、他の態様において、ヌクレアーゼ蛋白質はターゲット核酸分子を切断するために二量体化または多量体化しなければならない。天然に存在するヌクレアーゼの結合ドメインおよび切断ドメイン、さらには、特異的なターゲット部位に結合するヌクレアーゼを作製するために組み合わせられ得るモジュール的な結合ドメインおよび切断ドメインは、当業者に周知である。例えば、転写活性化因子様エレメントが、望まれるターゲット部位に特異的に結合する結合ドメインとして用いられ、切断ドメイン(例えばFokIの切断ドメイン)に融合またはコンジュゲーションされて、望まれるターゲット部位を切断する操作されたヌクレアーゼを作製し得る。
用語「核酸」および用語「核酸分子」は、本明細書において交換可能に用いられ、ヌクレオシド、ヌクレオチド、またはヌクレオチドのポリマーを含む化合物を言う。典型的には、ポリマー核酸、例えば3または4ヌクレオチド以上を含む核酸分子はリニアな分子であり、隣接したヌクレオチドがホスホジエステル結合を介して互いに連結される。いくつかの態様において、「核酸」は個体の核酸残基(例えば、ヌクレオチドおよび/またはヌクレオシド)を言う。いくつかの態様において、「核酸」は、3つまたは4つ以上の個体のヌクレオチド残基を含むオリゴヌクレオチド鎖を言う。本明細書において用いられる場合、用語「オリゴヌクレオチド」および「ポリヌクレオチド」は、ヌクレオチドのポリマー(例えば、少なくとも3ヌクレオチドのストリング)を言うために交換可能に用いられ得る。いくつかの態様において、「核酸」は、RNA、さらには一および/または二本鎖DNAを包含する。核酸は、例えばゲノム、転写物、mRNA、tRNA、rRNA、siRNA、snRNA、プラスミド、コスミド、染色体、クロマチド、または他の天然に存在する核酸分子の文脈において、天然に存在し得る。他方で、核酸分子は、天然に存在しない分子、例えば組み換えDNAもしくはRNA、人工染色体、操作されたゲノムもしくはその断片、または合成DNA、RNA、DNA/RNAハイブリッドであり得、または天然に存在しないヌクレオチドもしくはヌクレオシドを包含しており得る。さらに、用語「核酸」、「DNA」、「RNA」、および/または類似の用語は、核酸アナログ、すなわちホスホジエステルバックボーン以外を有するアナログを包含する。核酸は天然ソースから精製され得、組み換え発現システムを用いて生成されて任意で精製され得、化学合成などされ得る。適切なところでは、例えば化学合成された分子の場合では、核酸はヌクレオシドアナログ(例えば、化学的に改変された塩基または糖を有するアナログ)およびバックボーン改変を含み得る。核酸配列は、別様に示さない限り5’から3’方向に提出される。いくつかの態様において、核酸は、天然ヌクレオシド(例えば、アデノシン、チミジン、グアノシン、シチジン、ウリジン、デオキシアデノシン、デオキシチミジン、デオキシグアノシン、およびデオキシシチジン)、ヌクレオシドアナログ(例えば、2-アミノアデノシン、2-チオチミジン、イノシン、ピロロ-ピリミジン、3-メチルアデノシン、5-メチルシチジン、2-アミノアデノシン、C5-ブロモウリジン、C5-フルオロウリジン、C5-ヨードウリジン、C5-プロピニル-ウリジン、C5-プロピニル-シチジン、C5-メチルシチジン、2-アミノアデノシン、7-デアザアデノシン、7-デアザグアノシン、8-オキソアデノシン、8-オキソグアノシン、O(6)-メチルグアニン、および2-チオシチジン)、化学的に改変された塩基、生物学的に改変された塩基(例えば、メチル化された塩基)、インターカレーション塩基、改変された糖(例えば、2’-フルオロリボース、リボース、2’-デオキシリボース、アラビノース、およびヘキソース)、および/または改変されたリン酸基(例えば、ホスホロチオエートおよび5’-N-ホスホロアミダイト結合)であるか、またはそれを含む。
用語「医薬組成物」は、本明細書において用いられる場合、例えば疾患または障害の処置の文脈において対象に投与され得る組成物を言う。いくつかの態様において、医薬組成物は、有効成分(例えば、ヌクレアーゼなどの機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質、または、例えば融合蛋白質の形態で超荷電蛋白質と機能的なエフェクター蛋白質とをコードする核酸)と薬学的に許容可能な賦形剤とを含む。
用語「生理pH」は、本明細書において用いられる場合、正常な非病的な(non-pathologic)細胞または対象に見いだされるpH値を言う。いくつかの態様において、生理pHはpH5~8である。いくつかの態様において、生理pHはpH7~7.5、例えばpH7.0、pH7.1、pH7.2、pH7.3、pH7.4、またはpH7.5である。いくつかの態様において、生理pHはpH6.5~7.5である。いくつかの態様において、生理pHはpH5、pH5.5、pH6、pH6.5、pH7、pH7.5、またはpH8である。
用語「予防」または「予防する」は、対象が疾患、障害、もしくは状態を発症する確率の減少を(予防無しの確率と比較して)もたらす、疾患、障害、もしくは状態を発症するリスクがある(例えば、コントロールの対象もしくは対象のコントロール群と比較して高まったリスクがあるか、または年齢をマッチングおよび/もしくは性別をマッチングした対象の平均リスクと比較して高まったリスクがある)対象の予防処置、および/または既に確定した障害のさらなる進展の阻害を言う。
用語「増殖性疾患」は、本明細書において用いられる場合、細胞または細胞集団が異常に高まった増殖比率を示すという点で、細胞または組織のホメオスタシスが乱されているいずれかの疾患を言う。増殖性疾患は、前新生物性の過形成状態および新生物疾患などの増殖亢進性疾患を包含する。新生物疾患は細胞の異常な増殖によって特徴づけられ、良性および悪性新生物を両方とも包含する。悪性新生物は癌ともまた言われる。
用語「蛋白質」は本明細書において「ペプチド」および「ポリペプチド」と交換可能に用いられ、ペプチド(アミド)結合によって連結されたアミノ酸残基のポリマーを言う。用語は、いずれかのサイズ、構造、または機能の蛋白質、ペプチド、またはポリペプチドを言う。典型的には、蛋白質、ペプチド、またはポリペプチドは少なくとも3アミノ酸長であろう。蛋白質、ペプチド、またはポリペプチドは、個体の蛋白質または蛋白質の集まりを言い得る。蛋白質、ペプチド、またはポリペプチド中のアミノ酸の1つまたは2つ以上は、例えば化学的実体(例えば、コンジュゲーション、官能化、または他の改変のための炭水化物基、ヒドロキシル基、リン酸基、ファルネシル基、イソファルネシル基、脂肪酸基、リンカーなど)の追加によって改変され得る。蛋白質、ペプチド、またはポリペプチドは単一の分子でもまたあり得るか、または多分子複合体であり得る。蛋白質、ペプチド、またはポリペプチドは、天然に存在する蛋白質またはペプチドの単に断片であり得る。蛋白質、ペプチド、またはポリペプチドは、天然に存在する、組み換え、もしくは合成、またはそのいずれかの組み合わせであり得る。蛋白質は異なるドメインを含み得、例えば、TALEエフェクター蛋白質は核酸結合ドメインとエフェクタードメイン(例えば、核酸切断ドメインまたは転写活性化因子もしくは抑制因子ドメイン)とを含み得る。いくつかの態様において、蛋白質は蛋白質性部分(例えば、核酸結合ドメインを構成するアミノ酸配列)と有機化合物(例えば、核酸切断薬剤として作用し得る化合物)とを含む。
用語「RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼ」および「RNAによってガイドされるヌクレアーゼ」は本明細書において交換可能に用いられ、切断のターゲットではない1つまたは2つ以上のRNA分子と複合体を形成する(例えば、結合するかまたは結びつく)ヌクレアーゼを言う。いくつかの態様において、RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼは、RNAとの複合体であるときに、ヌクレアーゼ:RNA複合体と言われ得る。RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼはCas9を包含する。典型的には、結合したRNA(単数または複数)はガイドRNA(gRNA)と言われる。gRNAは、2つもしくは3つ以上のRNAの複合体としてまたは単一のRNA分子として存在し得る。単一のRNA分子として存在するgRNAはシングルガイドRNA(sgRNA)と言われ得るが、「gRNA」は、単一の分子としてまたは2つもしくは3つ以上の分子の複合体としていずれかで存在するガイドRNAを言うために交換可能に用いられる。典型的には、単一のRNA種として存在するgRNAは、2つのドメイン(1)ターゲット核酸に対する相同性を共有する(例えば、そしてターゲットへのCas9複合体の結合を導く)ドメインと(2)Cas9蛋白質に結合するドメインとを含む。gRNAはターゲット部位を相補するヌクレオチド配列を含み、これが、そのターゲット部位へのヌクレアーゼ/RNA複合体の結合を媒介し、ヌクレアーゼ:RNA複合体の配列特異性を提供する。
用語「リコンビナーゼ」は、本明細書において用いられる場合、リコンビナーゼ認識配列間におけるDNAの組み換えを媒介する部位特異的酵素を言い、これはリコンビナーゼ認識配列間におけるDNA断片の切り出し、インテグレーション、逆位、または交換(例えば転座)をもたらす。リコンビナーゼは、2つの別個のファミリー、セリンリコンビナーゼ(例えば、リゾルベースおよびインベルターゼ)およびチロシンリコンビナーゼ(例えばインテグラーゼ)に分類され得る。セリンリコンビナーゼの例は、限定無しに、Hin、Gin、Tn3、β-six、CinH、ParA、γδ、Bxb1、φC31、TP901、TG1、φBT1、R4、φRV1、φFC1、MR11、A118、U153、およびgp29を包含する。チロシンリコンビナーゼの例は、限定無しに、Cre、FLP、R、ラムダ、HK101、HK022、およびpSAM2を包含する。セリンおよびチロシンリコンビナーゼの名前は、リコンビナーゼがDNAを攻撃するために用い、鎖交換中にDNAに共有結合的に連結される保存された求核性アミノ酸残基から来ている。リコンビナーゼは数々の応用を有し、遺伝子ノックアウト/ノックインの作製および遺伝子治療応用を包含する。例えば、Brown et al.,「Serine ricombinases as tools for genome engineering.」Methods. 2011;53(4):372-9、Hirano et al.,「Site-specific recombinases as tools for heterologous gene integration.」Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011; 92(2):227-39、Chavez and Calos,「Therapeutic applications of the φC31 integrase system.」Curr. Gene Ther. 2011;11(5):375-81、Turan and Bode,「Site-specific recombinases: from tag-and-target- to tag-and-exchange-based genomic modifications.」FASEB J. 2011; 25(12):4088-107、Venken and Bellen,「Genome-wide manipulations of Drosophila melanogaster with transposons, Flp recombinase, and φC31 integrase.」Methods Mol. Biol. 2012; 859:203-28、Murphy,「Phage recombinases and their applications.」Adv. Virus Res. 2012; 83:367-414、Zhang et al.,「Conditional gene manipulation: Cre-ating a new biological era.」J. Zhejiang Univ. Sci. B. 2012; 13(7):511-24、Karpenshif and Bernstein,「From yeast to mammals: recent advances in genetic control of homologous recombination.」DNA Repair (Amst). 2012; 1;11(10):781-8参照。それぞれの全内容はそれらの全体が参照によってここに組み込まれる。本明細書において提供されるリコンビナーゼは、本発明の態様に用いられ得るリコンビナーゼの排他的な例であることを意味されてはいない。本発明の方法および組成物は、新たな直交系リコンビナーゼについてデータベースをマイニングすることまたは定義されたDNA特異性を有する合成リコンビナーゼを設計することによって拡充され得る(例えば、Groth et al.,「Phage integrases: biology and applications.」J. Mol. Biol. 2004; 335, 667-678、Gordley et al.,「Synthesis of programmable integrases.」Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 2009; 106, 5053-5058参照。それぞれの全内容はそれらの全体が参照によってここに組み込まれる)。本明細書に記載される方法および組成物に有用であるリコンビナーゼの他の例は当業者に公知であり、発見または生成されるいずれかの新たなリコンビナーゼは、本発明の異なる態様に用いられる能力があると予想される。いくつかの態様において、リコンビナーゼ(またはその触媒ドメイン)はCas9蛋白質(例えば、dCas9)に融合する。
用語「組み換える」または「組み換え」は、核酸改変(例えばゲノム改変)の文脈で、2つもしくは3つ以上の核酸分子または単一核酸分子の2つもしくは3つ以上の領域がリコンビナーゼ蛋白質の作用によって改変されるプロセスを言うために用いられる。組み換えは、ことに、例えば1つまたは2つ以上の核酸分子内または間における核酸配列の挿入、逆位、切り出し、または転座をもたらし得る。
用語「対象」は、本明細書において用いられる場合、個体生物を言う。いくつかの態様において、対象はいずれかの性または成長のいずれかの段階のヒトである。いくつかの態様において、対象は非ヒト哺乳動物である。いくつかの態様において、対象は非ヒト霊長類である。いくつかの態様において、対象はげっ歯類である。いくつかの態様において、対象は実験動物、例えばマウス、ラット、アレチネズミ、モルモット、魚、カエル、またはハエである。いくつかの態様において、対象は家畜、例えばヒツジ、ヤギ、ブタ、またはウシである。いくつかの態様において、対象はコンパニオンアニマル、例えばネコまたはイヌである。いくつかの態様において、対象は脊椎動物、両生類、爬虫類、魚類、昆虫、ハエ、または線虫である。いくつかの態様において、対象は遺伝子操作されており、例えば、遺伝子操作された非ヒト対象である。
用語「超荷電させる(supercharge)」は、蛋白質の正味の総電荷の増大または減少をもたらす蛋白質のいずれかの改変を言う。改変は、アミノ酸配列の変化または荷電部分(例えば、カルボン酸基、リン酸基、硫酸基、アミノ基)の追加を包含するが、これに限定されない。超荷電(supercharging)は、薬剤単独とは相対的に増大または減少した電荷を有する複合体を形成することになる、天然に存在するかまたは改変された荷電蛋白質との薬剤の結びつきをもまた言う。
用語「ターゲット部位」は、核酸分子に結合する機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼおよび転写活性化因子または抑制因子)の文脈で本明細書において用いられる場合、エフェクター蛋白質によって結合されて作用される(例えば、ヌクレアーゼによって切断されるか、または転写活性化因子もしくは抑制因子によってそれぞれ転写活性化もしくは抑制される)核酸分子中の配列を言う。ターゲット部位は一本鎖または二本鎖であり得る。RNAによってガイドされる(例えば、RNAによってプログラミング可能な)ヌクレアーゼ(例えばCas9)の文脈では、ターゲット部位は、RNAによってプログラム可能なヌクレアーゼのgRNAに相補的であるヌクレオチド配列と、gRNA相補配列に隣接した3’末端にあるプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)とを典型的には含む。RNAによってガイドされるヌクレアーゼCas9(または、gRNA結合活性を有することを含むバリアントもしくは融合体)について、ターゲット部位は、いくつかの態様において、20塩基対+3塩基対PAM(例えばNNN。Nはいずれかのヌクレオチドを表す)であり得る。典型的には、PAMの最初のヌクレオチドはいずれかのヌクレオチドであり得、一方、2つの下流ヌクレオチドは、特定のRNAによってガイドされるヌクレアーゼに依存して規定される。Cas9などのRNAによってガイドされるヌクレアーゼの例示的なターゲット部位は当業者に公知であり、限定無しにNNG、NGN、NAG、およびNGGを包含し、Nはいずれかのヌクレオチドを表す。加えて、異なる種(例えば、S.pyogenesの代わりにS.thermophilus)からのCas9ヌクレアーゼは、配列NGGNGを含むPAMを認識する。追加のPAM配列が公知であり、NNAGAAWおよびNAARを包含するが、これに限定されない(例えば、Esvelt and Wang, Molecular Systems Biology, 9:641 (2013)参照。その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。例えば、例えばCas9などのRNAによってガイドされるヌクレアーゼのターゲット部位は構造[NZ]-[PAM]を含み得、各Nは独立していずれかのヌクレオチドであり、Zは1~50の整数である。いくつかの態様において、Zは少なくとも2、少なくとも3、少なくとも4、少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9、少なくとも10、少なくとも11、少なくとも12、少なくとも13、少なくとも14、少なくとも15、少なくとも16、少なくとも17、少なくとも18、少なくとも19、少なくとも20、少なくとも25、少なくとも30、少なくとも35、少なくとも40、少なくとも45、または少なくとも50である。いくつかの態様において、Zは5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、または50である。いくつかの態様において、Zは20である。いくつかの態様において、「ターゲット部位」は、ヌクレアーゼによって結合されるが切断はされない核酸分子中の配列をもまた言い得る。例えば、本明細書に記載されるある種の態様は、不活性な(または不活性型の)Cas9のDNA切断ドメインを含む蛋白質を提供する。かかる蛋白質は(例えば、Cas9のRNA結合ドメインをもまた包含するときに)、gRNAによって規定されるターゲット部位に結合する能力がある。しかしながら、DNA切断部位が不活性化されているので、ターゲット部位はこの蛋白質によって切断されない。しかしながら、本明細書に記載されるかかる蛋白質は、典型的には、核酸分子の改変を媒介する別の蛋白質(例えばヌクレアーゼ、転写活性化因子、リコンビナーゼ、デアミナーゼなど)または分子にコンジュゲーション、融合、または結合される。いくつかの態様において、実際に切断される配列は、核酸分子の切断を媒介する蛋白質(例えばヌクレアーゼ)または分子に依存するであろう。いくつかの場合では、例えば、不活性型Cas9蛋白質(単数または複数)が結合している近位または距離に関係するであろう。二量体化するヌクレアーゼ(例えば、不活性なCas9(またはCas9のRNA結合ドメイン)とDNA切断ドメイン(例えば、FokI切断ドメインまたは活性なCas9切断ドメイン)とを含む蛋白質の二量体)の文脈では、ターゲット部位は、左ハーフ部位(1つの蛋白質によって結合される)、右ハーフ部位(第2の蛋白質によって結合される)、およびハーフ部位間のスペーサー配列(ここで切断がなされる)を典型的には含む。いくつかの態様においては、左ハーフ部位または右ハーフ部位いずれか(かつスペーサー配列では無い)が切断される。この構造([左ハーフ部位]-[スペーサー配列]-[右ハーフ部位])は、本明細書においてLSR構造と言われる。いくつかの態様において、左ハーフ部位および/または右ハーフ部位はRNAによってガイドされるターゲット部位(例えばCas9ターゲット部位)に対応する。いくつかの態様において、いずれかまたは両方のハーフ部位は、例えばCas9によってターゲット化される典型的な領域よりも短いかまたは長く、例えば20ヌクレオチドよりも短いかまたは長い。いくつかの態様において、左および右ハーフ部位は異なる核酸配列を含む。いくつかの態様において、ターゲット部位は、3つの(3)RNAによってガイドされるヌクレアーゼのターゲット部位配列(例えばCas9ターゲット部位配列に対応する3つの配列)を含む配列であり、第1および第2ならびに第2および第3のCas9ターゲット部位配列がスペーサー配列によって離間される。いくつかの態様において、スペーサー配列は少なくとも5、少なくとも6、少なくとも7、少なくとも8、少なくとも9、少なくとも10、少なくとも11、少なくとも12、少なくとも13、少なくとも14、少なくとも15、少なくとも16、少なくとも17、少なくとも18、少なくとも19、少なくとも20、少なくとも25、少なくとも30、少なくとも35、少なくとも40、少なくとも45、少なくとも50、少なくとも60、少なくとも70、少なくとも80、少なくとも90、少なくとも100、少なくとも125、少なくとも150、少なくとも175、少なくとも200、または少なくとも250bp長である。
用語「転写活性化因子」および「転写抑制因子」は、それぞれ、ターゲット核酸配列に結合して、ターゲット核酸配列と結びついた遺伝子産物の発現のレベルの増大または減少を引き起こす蛋白質(例えば、転写因子またはその断片)などの薬剤を言う。例えば、ターゲット核酸配列が遺伝子の制御領域内に位置する場合に、転写活性化因子は、遺伝子によってコードされる遺伝子産物の発現のレベルの増大を引き起こす(反対に、転写抑制因子は、遺伝子によってコードされる遺伝子産物の発現のレベルの減少を引き起こす)。遺伝子産物は、遺伝子から転写されたRNA(例えばmRNA)、または遺伝子から転写されたmRNAから翻訳されたポリペプチドであり得る。典型的には、mRNAのレベルの増大または減少は、それから翻訳されるポリペプチドのレベルの減少、増大をもたらす。発現のレベルは、mRNAまたは蛋白質を測定するための標準的な技術を用いて決定され得る。
用語「転写活性化因子様エフェクター」(TALE)は、本明細書において用いられる場合、高度に可変の2アミノ酸モチーフ(リピート可変二残基、RVD)を含む高度に保存された33~34アミノ酸配列を含有するDNA結合ドメインを含むエフェクター蛋白質を言う。RVDモチーフは核酸配列に対する結合特異性を決定し、当業者に周知の方法に従って操作されて、望まれるDNA配列に特異的に結合し得る(例えば、Miller, Jeffrey; et.al. (February 2011). 「A TALE nuclease architecture for efficient genome editing」. Nature Biotechnology 29 (2): 143-8、Zhang, Feng; et.al. (February 2011).「Efficient construction of sequence-specific TAL effectors for modulating mammalian transcription」. Nature Biotechnology 29 (2): 149-53、Geiβler, R.; Scholze, H.; Hahn, S.; Streubel, J.; Bonas, U.; Behrens, S. E.; Boch, J. (2011), Shiu, Shin-Han. ed.「Transcriptional Activators of Human Genes with Programmable DNA-Specificity」. PLoS ONE 6 (5): e19509、Boch, Jens (February 2011).「TALEs of genome targeting」. Nature Biotechnology 29 (2): 135-6、Boch, Jens; et.al. (December 2009). 「Breaking the Code of DNA Binding Specificity of TAL-Type III Effectors」. Science 326 (5959): 1509-12、およびMoscou, Matthew J.; Adam J. Bogdanove (December 2009). 「A Simple Cipher Governs DNA Recognition by TAL Effectors」. Science 326 (5959): 1501参照。そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。アミノ酸配列とDNA認識との間の単純な関係性は、適切なRVDを含有するリピートセグメントの組み合わせを選択することによって、特異的なDNA結合ドメインの操作を可能とした。TALEエフェクター蛋白質は、限定無しに、TALEヌクレアーゼ(TALEN)ならびにTALE転写活性化因子および抑制因子を包含する。
用語「転写活性化因子様エレメントヌクレアーゼ」(TALEN)は、本明細書において用いられる場合、DNA切断ドメイン(例えばFokIドメイン)に転写活性化因子様エフェクターDNA結合ドメインを含む人工ヌクレアーゼを言う。操作されたTALE構築物を生成するためのいくつものモジュール的なアセンブリスキームが報告されている(Zhang, Feng; et.al. (February 2011).「Efficient construction of sequence-specific TAL effectors for modulating mammalian transcription」. Nature Biotechnology 29 (2): 149-53、Geiβler, R.; Scholze, H.; Hahn, S.; Streubel, J.; Bonas, U.; Behrens, S. E.; Boch, J. (2011), Shiu, Shin-Han. ed.「Transcriptional Activators of Human Genes with Programmable DNA-Specificity」. PLoS ONE 6 (5): e19509、Cermak, T.; Doyle, E. L.; Christian, M.; Wang, L.; Zhang, Y.; Schmidt, C; Bailer, J. A.; Somia, N. V. et al. (2011).「Efficient design and assembly of custom TALEN and other TAL effector-based constructs for DNA targeting」. Nucleic Acids Research、Morbitzer, R.; Elsaesser, J.; Hausner, J.; Lahaye, T. (2011).「Assembly of custom TALE-type DNA binding domains by modular cloning」. Nucleic Acids Research、Li, T.; Huang, S.; Zhao, X.; Wright, D. A.; Carpenter, S.; Spalding, M. H.; Weeks, D. P.; Yang, B. (2011).「Modularly assembled designer TAL effector nucleases for targeted gene knockout and gene replacement in eukaryotes」. Nucleic Acids Research.、Weber, E.; Gruetzner, R.; Werner, S.; Engler, C; Marillonnet, S. (2011). Bendahmane, Mohammed, ed. 「Assembly of Designer TAL Effectors by Golden Gate Cloning」. PLoS ONE 6 (5): el9722。そのそれぞれは参照によって本明細書に組み込まれる)。
用語「転写抑制因子」は、核酸配列に結合して、ターゲット核酸配列と結びついた遺伝子産物の発現のレベルの低減を引き起こす転写因子(例えば蛋白質)を言う。例えば、ターゲット核酸配列が遺伝子の制御領域内に位置する場合に、転写抑制因子は、遺伝子によってコードされる遺伝子産物の発現のレベルの低減を引き起こす。遺伝子産物は、遺伝子から転写されたRNA(例えばmRNA)、または遺伝子から転写されたmRNAから翻訳されたポリペプチドであり得る。典型的には、mRNAのレベルの低減は、それから翻訳されるポリペプチドのレベルの低減をもたらす。発現のレベルは、mRNAまたは蛋白質を測定するための標準的な技術を用いて決定され得る。
用語「ジンクフィンガーヌクレアーゼ」は、本明細書において用いられる場合、ジンクフィンガーアレイを含む結合ドメインにコンジュゲーションされた核酸切断ドメインを含むヌクレアーゼを示す。いくつかの態様において、切断ドメインはII型制限エンドヌクレアーゼFokIの切断ドメインである。ジンクフィンガーヌクレアーゼは、切断のために所与の核酸分子中のほとんどいずれかの望まれる配列をターゲット化するように設計され得、複雑なゲノムの文脈でユニークな部位に結合するようにジンクフィンガー結合ドメインを設計する可能性は、生細胞内の単一のゲノム部位のターゲット化された切断を可能とし、例えば、治療上の価値があるターゲット化されたゲノム変化を達成する。望まれるゲノム遺伝子座への二本鎖切断をターゲット化することは、非相同DNA修復経路の誤りがちな性質が原因で、遺伝子のコード配列中にフレームシフト変異を導入するために用いられ得る。ジンクフィンガーヌクレアーゼは、当業者に周知の方法によって興味ある部位をターゲット化するように生成され得る。例えば、望まれる特異性を有するジンクフィンガー結合ドメインは、既知の特異性の個体のジンクフィンガーモチーフを組み合わせることによって設計され得る。DNAに結合したジンクフィンガー蛋白質Zif268の構造は、この分野における研究のかなりに情報を与えた。64個の可能な塩基対トリプレットのそれぞれについてジンクフィンガーを得て、それからそれらのモジュール的なジンクフィンガーを混合およびマッチングし、いずれかの望まれる配列特異性を有する蛋白質を設計するというコンセプトが記載されている(Pavletich NP, Pabo CO (May 1991).「Zinc finger-DNA recognition: crystal structure of a Zif268-DNA complex at 2.1 A」. Science 252 (5007): 809-17。その全内容は本明細書に組み込まれる)。いくつかの態様において、それぞれ3塩基対DNA配列を認識する別々のジンクフィンガーが組み合わされて、長さ9塩基対~18塩基対に渡るターゲット部位を認識する3、4、5、または6フィンガーアレイを生成する。いくつかの態様において、より長いアレイが考えられる。他の態様において、6~8ヌクレオチドを認識する2フィンガーモジュールが組み合わされて、4、6、または8ジンクフィンガーアレイを生成する。いくつかの態様において、細菌またはファージディスプレイが使用されて、望まれる核酸配列(例えば長さ3~30bpの望まれるヌクレアーゼターゲット部位)を認識するジンクフィンガードメインを開発する。ジンクフィンガーヌクレアーゼは、いくつかの態様において、リンカー(例えばポリペプチドリンカー)を介して互いに融合または別様にコンジュゲーションされたジンクフィンガー結合ドメインと切断ドメインとを含む。リンカーの長さは、ジンクフィンガードメインによって結合される核酸配列からの切断の距離を決定する。より短いリンカーが用いられる場合、切断ドメインは、結合される核酸配列により近接した核酸を切断するであろう。一方、より長いリンカーは、切断および結合される核酸配列間のより大きい距離をもたらすであろう。いくつかの態様において、ジンクフィンガーヌクレアーゼの切断ドメインは、結合した核酸を切断するために二量体化しなければならない。いくつかのかかる態様において、二量体は2つの単量体のへテロ二量体であり、そのそれぞれは異なるジンクフィンガー結合ドメインを含む。例えば、いくつかの態様において、二量体は、FokI切断ドメインにコンジュゲーションされたジンクフィンガードメインAを含む1つの単量体とFokI切断ドメインにコンジュゲーションされたジンクフィンガードメインBを含む1つの単量体とを含み得る。この限定しない例において、ジンクフィンガードメインAはターゲット部位の1つの側の核酸配列に結合し、ジンクフィンガードメインBはターゲット部位のもう一方の側の核酸配列に結合し、二量体化FokIドメインは核酸をジンクフィンガードメイン結合部位間において切断する。
用語「ジンクフィンガー」は、本明細書において用いられる場合、小さい核酸結合蛋白質構造モチーフを言い、フォールドとフォールドを安定化する1つまたは2つ以上の亜鉛イオンの配位とによって特徴づけられる。ジンクフィンガーは、さまざまな異なる蛋白質構造を包含する(例えば、Klug A, Rhodes D (1987).「Zinc fingers: a novel protein fold for nucleic acid recognition」. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 52: 473-82参照。その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。ジンクフィンガーは、ヌクレオチドの特異的な配列に結合するように設計され得、一連のジンクフィンガーの融合体を含むジンクフィンガーアレイが、ほとんどいずれかの望まれるターゲット配列に結合するように設計され得る。かかるジンクフィンガーアレイは、蛋白質の(例えば、核酸切断ドメインにコンジュゲーションされた場合には、例えばヌクレアーゼの)結合ドメインを形成し得る。ジンクフィンガーモチーフの異なる型が当業者に公知であり、CysHis、Gagナックル、Treble-clef、Zincリボン、Zn/Cys、およびTAZ2ドメイン様モチーフを包含するが、これに限定されない(例えば、Krishna SS, Majumdar I, Grishin NV (January 2003).「Structural classification of zinc fingers: survey and summary」. Nucleic Acids Res. 31 (2): 532-50参照)。典型的には、単一のジンクフィンガーモチーフは核酸分子の3または4ヌクレオチドに結合する。従って、2つのジンクフィンガーモチーフを含むジンクフィンガードメインは6~8ヌクレオチドに結合し得、3つのジンクフィンガーモチーフ含むジンクフィンガードメインは9~12ヌクレオチドに結合し得、4つのジンクフィンガーモチーフを含むジンクフィンガードメインは12~16ヌクレオチドに結合し得る、などである。いずれかの好適な蛋白質操作技術が使用されて、長さ3~30ヌクレオチドのほとんどいずれかの望まれるターゲット配列に結合するように、ジンクフィンガーのDNA結合特異性を変化および/または新規のジンクフィンガー融合体を設計し得る(例えば、Pabo CO, Peisach E, Grant RA (2001).「Design and selection of novel cys2His2 Zinc finger proteins」. Annual Review of Biochemistry 70: 313-340、Jamieson AC, Miller JC, Pabo CO (2003).「Drug discovery with engineered zinc-finger proteins」. Nature Reviews Drug Discovery 2 (5): 361-368、およびLiu Q, Segal DJ, Ghiara JB, Barbas CF (May 1997).「Design of polydactyl zinc-finger proteins for unique addressing within complex genomes」. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94 (11)参照。そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。操作されたジンクフィンガーアレイと核酸を切断する蛋白質ドメインとの間の融合は、「ジンクフィンガーヌクレアーゼ」を生成するために用いられ得る。ジンクフィンガーヌクレアーゼは、核酸分子中の特異的なターゲット部位に結合するジンクフィンガードメインと、結合ドメインによって結合されたターゲット部位内またはその近位で核酸分子を切断する核酸切断ドメインとを典型的には含む。典型的な操作されたジンクフィンガーヌクレアーゼは、3~6つの個体のジンクフィンガーモチーフを有しかつ長さ9塩基対~18塩基対に渡るターゲット部位に結合する結合ドメインを含む。より長いターゲット部位は、所与のゲノム中のユニークであるターゲット部位に結合して切断することが望まれる状況において特に魅力的である。
用語「処置」、「処置する」、および「処置すること」は、本明細書に記載される疾患もしくは障害またはその1つもしくは2つ以上の症状を逆転する、緩和する、その始まりを遅延させる、またはその進行を阻害することを狙った臨床的な措置を言う。本明細書において用いられる場合、用語「処置」、「処置する」、および「処置すること」は、本明細書に記載される疾患もしくは障害またはその1つもしくは2つ以上の症状を逆転する、緩和する、その始まりを遅延させる、またはその進行を阻害することを狙った臨床的な措置を言う。いくつかの態様において、処置は、1つまたは2つ以上の症状が発症した後および/または疾患が診断された後に投与され得る。他の態様において、処置は、例えば症状を予防するもしくはその始まりを遅延させるまたは疾患の始まりもしくは進行を阻害するために、症状の非存在下で投与され得る。例えば、処置は、症状の始まりに先立って(例えば、症状の既往に照らしておよび/または遺伝学的もしくは他の患いやすい因子に照らして)患いやすい個体に投与され得る。処置は、例えばそれらの再発を予防するかまたは遅延させるために、症状が消散した後にもまた継続され得る。
哺乳類細胞内への高分子送達の模式図。 脂肪細胞細胞運命をプログラミングする:白色脂肪組織(WAT)から褐色脂肪組織(BAT)への切り換え。 PPARγまたはPRDM16をターゲット化するようにプログラミングされたTALE活性化因子を送達するするために、超荷電送達プラットフォームを用いる。 +36GFP融合体、18.5merのTALEドメイン、およびVP64活性化ドメインを含む融合蛋白質の模式図。 +36GFP-TALE活性化因子-融合蛋白質の発現および精製。
+36GFP-PPARγおよびPRDM16-TALE活性化因子融合蛋白質の送達による脂肪細胞制御因子遺伝子の活性化についての試験。 異なる濃度での+36GFP-TALE活性化因子融合蛋白質の送達有効性。 NIH3T3細胞における2つの異なる+36GFP-PRDM16-TALE融合蛋白質の送達有効性の比較。 PPARγ-TALE活性化因子融合体の送達後のPPARγ遺伝子発現と、様々なコントロールに対する比較。
RDM16-TALE活性化因子融合体の送達後のPRDM16遺伝子発現と、様々なコントロールに対する比較。 中程度のTALE活性が血清の存在下で観察される。 脂肪生成カクテルによる7日間の処置が続く、PPARγのウイルス送達の検証。 線維芽細胞をWATおよびBATにプログラミングするためのアッセイの模式図。 +36GFP-TALE活性化因子融合蛋白質による処置によって観察された脂肪細胞形成。 LipidTOX redによる7日後の様々な処置の染色が、ウイルス送達後、さらには超荷電PPARγ-TALE活性化因子融合蛋白質の送達後の脂肪細胞の形成を示している。
LipidTOX redによる7日後の様々な処置の染色が、ウイルス送達後、さらには超荷電PPARγ-TALE活性化因子融合蛋白質の送達後の脂肪細胞の形成を示している。 ウイルス送達後、さらには超荷電PPARγ-TALE活性化因子融合蛋白質の送達後のWATバイオマーカー遺伝子の発現。 インビボで褐色脂肪の脂肪細胞を誘導するための超荷電PRDM16-TALE活性化因子融合蛋白質の送達。堅牢な脂肪細胞形成が、PPARγおよびPRDM16のウイルス送達後に、かつ超荷電TALE活性化因子蛋白質融合体の送達後にもまた観察された。 PPARγおよびPRDM16の発現による褐色脂肪マーカーのTALE/TALE、ウイルス/TALE、およびウイルス/ウイルスによって誘導される発現の比較。
RT-qPCR評価は、LipidTOX染色によって観察された脂肪細胞分化と一致している。 +36GFPとの複合体としての機能的なTALE活性化因子融合蛋白質の送達は、送達後のTALE活性化因子活性を改善する。 +36GFPとの融合体(+36GFP-PRDM16-TALE-3)または複合体(+36GFP+PRDM16-TALE-3)いずれかとしてのTALE活性化因子融合体送達後の、PRDM16遺伝子発現。複合体の送達はTALE活性化因子活性を増大させる傾向がある。
(+36GFPとの融合体または複合体いずれかとしての)TALE活性化因子融合体送達後のPRDM16遺伝子発現に、+36GFPへのAureinペプチド融合が及ぼす効果。 Lipofectamine LTXによる融合体(+36GFP-PRDM16-TALE-3)または複合体(+36GFP+PRDM16-TALE-3)いずれかとしてのTALE活性化因子融合体送達後の、PRDM16遺伝子発現。 哺乳類細胞内へのCas9との超荷電融合蛋白質または複合体の送達。(GGS)9-T-ALAL-PKKKRKVは配列番号251に対応する。 野生型Cas9蛋白質ならびに+36GFPおよびAurein-GGS9とのCas9融合蛋白質の精製。
ポリアニオン性高分子との融合または非共有結合的な複合体化、およびカチオン性脂質による封入によって哺乳類細胞内に蛋白質を送達するための戦略が示されている。図27(A)は、リコンビナーゼ、転写活性化因子様エフェクター(TALE)蛋白質、およびCas9エンドヌクレアーゼが核酸に結合し、自然にカチオン性であり(正味の理論上の電荷が黒色で示されている)、カチオン性脂質によって効率的には封入されないということを示している。しかしながら、それらの蛋白質は、(-30)GFPなどの超負荷電蛋白質への融合によって、またはポリアニオン性核酸との複合体化によって高度にアニオン性にされ得る。図27(B)は、DNAおよびRNAをトランスフェクションするために普通に用いられるカチオン性脂質が、もたらされる高度にアニオン性の蛋白質または蛋白質:核酸複合体を封入して、哺乳類細胞内へのそれらの送達を媒介するということを表す模式図を示す。
培養ヒト細胞へのCreリコンビナーゼの送達。図28(A)において、Creリコンビナーゼへの高度にカチオン性の(+36)GFPまたは高度にアニオン性の(-30)GFPいずれかの融合が示されている。Creによって媒介される組み換え時にDsRedを発現するHeLaレポーター細胞株が、Cre送達効率を評価するために用いられた。(GGS)9は配列番号252に対応し、His6は配列番号253に対応する。図28(B)において、HeLa-dsRed細胞は10nMの(-30)GFP-Creおよびカチオン性脂質RNAiMAXによって処置された。細胞は、10%ウシ胎児血清(FBS)を含有する培地中での48時間のインキュベーション後に可視化された。図28(C)は、10%FBS培地または無血清培地における(+36)GFP-Cre、および完全血清培地におけるカチオン性脂質RNAiMAX有りまたは無しでの(-30)GFP-Creの送達を示している。図28(D)は、10%FBSを含有する275μLの培地中での48時間後の機能的な(-30)GFP-Cre送達有効性に及ぼすカチオン性脂質用量の効果を提出している。図28(E)は、(-30)dGFP-Creの機能的な送達有効性についての数個の市販のカチオン性脂質およびポリマーの比較である。図28(F)は、Creに融合された複数のアニオン性ペプチドまたは蛋白質配列の、RNAiMAXによって媒介される送達を示している。エラーバーは、異なる日に実施された3つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
培養ヒト細胞内へのTALE転写活性化因子の送達。図29(A)は、VP64活性化ドメインにC末端融合されかつ(-30)GFPおよびNLSにN末端融合された18.5リピートTALE活性化因子の設計を示す。(GGS)9は配列番号251に対応し、His6は配列番号252に対応する。融合体の正味の理論上の総電荷は-43である。図29(B)は、NTF3遺伝子内の部位をターゲット化するTALE-VP64活性化因子をコードするプラスミドの従来型のトランスフェクションによる、または、対応するNTF3をターゲット化する(-30)GFP-TALE-VP64蛋白質のRNAiMAXカチオン性脂質によって媒介される送達による、NTF3転写の活性化を実証している。遺伝子発現レベルはqRT-PCRによって測定され、GAPDH発現レベルに対して正規化された。エラーバーは、異なる日に実施された3つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
培養ヒト細胞へのCas9:sgRNA、Cas9D10Aニッカーゼ、およびdCas9-VP64転写活性化因子の送達。図30(A)は、U2OSのEGFPレポーター細胞への、EGFPをターゲット化するsgRNAまたはVEGFをターゲット化するsgRNAと複合体化したCas9蛋白質バリアントのカチオン性脂質によって媒介される送達を実証している。結果が、Cas9およびsgRNA発現プラスミドの標準的なトランスフェクションのものと比較されている。図30(B)は、EGFPの改変を測定するためのT7エンドヌクレアーゼI(T7EI)アッセイの結果を示している。処置無し(レーン1)、EGFPをターゲット化するsgRNA単独による処置(レーン2)、Cas9蛋白質単独(レーン3)、Cas9蛋白質+VEGFをターゲット化するsgRNA+RNAiMAX(レーン4)、Cas9およびEGFPをターゲット化するsgRNAを発現するプラスミドのトランスフェクション(レーン5)、またはCas9蛋白質+EGFPをターゲット化するsgRNA+RNAiMAX(レーン6)から。密度測定によって計算されたインデル効率がゲル画像の下に示されている。図30(C)は、4つのsgRNAおよびRNAiMAXと複合体化したCas9の単一の送達による、EGFPおよび3つの内在性遺伝子におけるゲノム改変のT7EIアッセイの結果を提出している。密度測定によって計算されたインデル効率がゲル画像の下に示されている。図30(D)は、プラスミドトランスフェクションまたはRNAiMAXによって媒介される蛋白質:RNA複合体送達いずれかによる、sgRNAの対およびCas9D10Aニッカーゼの送達を示している。EGFPを破壊するsgRNAのGFPg1+GFPg5またはGFPg3+GFPg7は遺伝子破壊をもたらすと予想され、一方、GFPg5+GFPg7は同じ鎖をターゲット化し、そのため非機能的であると予想される。図30(E)は、プラスミドトランスフェクションまたはRNAiMAXによって媒介される蛋白質送達いずれかによる、NTF3をターゲット化する触媒不能(dCas9)-VP64転写活性化因子の送達を示す。VEGFg3およびVEGFg5のsgRNA両方の送達は、NTF3遺伝子活性化に負のコントロールとして働いた。エラーバーは、異なる日に実施された6つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
プラスミドトランスフェクションまたはカチオン性脂質によって媒介される蛋白質:sgRNA送達による、培養ヒト細胞におけるCas9によって媒介される内在性遺伝子切断のDNA配列特異性が示されている。図31(A)において、T7EIアッセイは、内在性CLTA、EMX、およびVEGF遺伝子のオンターゲット改変について実施された。図31(B~D)において、Cas9:sgRNAからもたらされるオンターゲット:オフターゲットDNA改変比が、プラスミドトランスフェクションまたはカチオン性脂質によって媒介される蛋白質:sgRNA送達について示されている。各処置の条件は、約10%のオンターゲット切断をもたらすように調整され、オンターゲット遺伝子改変効率が同程度である条件での2つの送達法間のDNA切断特異性の比較を可能にした。P値は表2に列挙されている。各オンおよびオフターゲットサンプルは一度シーケンシングされ、>10,000個の配列がオンターゲットサンプルあたり分析され、平均>111,000個の配列がオフターゲットサンプルあたり分析された(表2)。
マウス内耳の有毛細胞へのCreリコンビナーゼおよびCas9:sgRNA複合体のインビボ送達が示されている。図32(A)において、P0のfloxP-tdTomatoマウス(n=4)の中央階(蝸牛管)が、50%RNAiMAX中の23μMの(-30)GFP-Creの0.3μLをまたはRNAiMAX単独(コントロール)を注射された。5日後に、Creによって媒介される組み換えを示すtdTomato発現が、免疫組織学を用いて可視化された。赤色=tdTomato、緑色=Myo7a、白色=Sox2、青色=DAPI。黄色角括弧は外有毛細胞(OHC)層を示している。図32(B)は、コントロール蝸牛における不動毛と類似に、(-30)GFP-Cre送達の10日後に、tdTomato陽性の外有毛細胞の無傷(intact)のespin(Esp)を発現する不動毛が存在した(矢印)ということを示している。赤色=tdTomato、緑色=Esp、白色=Sox2、青色=DAPI。図32(C)は、RNAiMAXの代わりにLipofectamine 2000を用いることを除いて図32(A)と同一である(n=4)。上および下パネルはそれぞれ低および高倍率でのマウス蝸牛の画像であり、送達の効率、さらには蝸牛構造および有毛細胞喪失に及ぼす効果を詳細に示している。図32(D)は、P2のAtoh1-GFPマウス(n=3)の中央階(蝸牛管)が50%のRNAiMAXまたはLipofectamine 2000中の33μMのsgRNA、33μMのCas9の0.3μLを注射されたときの結果を示している。Cas9によって媒介される遺伝子破壊は、10日後に可視化されたときにGFP発現の喪失をもたらす。上パネルはGFPシグナルのみを示しており、一方、下パネルは追加の免疫組織学マーカーを包含している。下パネル中の黄色枠は、GFP発現を喪失した有毛細胞を強調している。赤色=tdTomato、緑色=Myo7a、白色/淡青色=Sox2、青色=DAPI。全てのスケールバーは白色で示されており、10μmである。
Creリコンビナーゼのカチオン性脂質によって媒介される送達の最適化。図33(A)は、BSR-TdTomato細胞(Cre組み換え効率を測定するために用いられる第2のレポーター細胞株)における(-30)GFP-Cre送達の最適化を示している。図33Bは、HeLaのdsRedレポーター細胞における(-30)GFP-Cre組み換え効率と毒性とに及ぼすRNAiMAX用量の効果を実証しており、FACSによって測定された。HeLa細胞が前方散乱および側方散乱ゲーティングによってソーティングされ、正常な形態を保持した生細胞を同定した。図33(C)は、Creリコンビナーゼに融合された蛋白質の正味電荷とカチオン性脂質によって媒介される機能的なCre送達効率との間の関係性を例証している。25nMの列挙されたドメインに融合されたCreリコンビナーゼが、1.5μLのRNAiMAXと組み合わせられて、HeLaのdsRedレポーター細胞と一緒にインキュベーションされた。2日後に、組み換え効率がFACSによって測定された。エラーバーは、異なる日に実施された3つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
カチオン性脂質によって媒介される送達対超正荷電カチオン性蛋白質送達による、蛋白質取り込み。図34(A)は、未結合の蛋白質を取り除くためにPBS+ヘパリン(20U/mL)によって細胞を洗浄した後に、(-30)GFP-CreおよびRNAiMAXまたは(+36)GFP-Creいずれかによって処置された細胞からのGFP蛍光を定量している。図34(B)は、(+36)GFPとの融合に起因するCreリコンビナーゼ送達効率と相対的に、(-30)GFP-Cre+1.5μLのRNAiMAXの機能的なCreリコンビナーゼ送達効率を示している。図34(C)は、処置の48時間後に合計の細胞集団の平均mCherry蛍光を測定することによって、(-30)GFP融合体+1.5μMのRNAiMAX処置対(+36)GFP融合体によるmCherry取り込みの比較を提供しており、PBS+ヘパリンによって細胞を洗浄している。図34(D)は、RNAiMAXの存在下または非存在下での(-30)GFP-Creまたは(+36)GFP-Creの合計の細胞GFP蛍光を示している。
NTF3遺伝子をターゲット化するように設計されたTALE活性化因子の送達最適化。HEK293T細胞が、トランスフェクションによるNTF3-TALEプラスミドまたはNTF3-TALE蛋白質のリポソーム送達いずれかによって処置された。細胞は、実験上決定された最適なインキュベーション時間の後に両方の処置について集められ、NTF3のmRNAレベルについてqRT-PCRによって分析された。最適な蛋白質(25~50nM)および脂質用量(1.5μLのRNAiMAX)が、図29Bにおける2つの送達技術の比較のために選ばれた。エラーバーは、異なる日に実施された6つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
Cas9:sgRNAの送達とフローサイトメトリーによる分析とによる、EGFPレポーター遺伝子の遺伝子破壊頻度の決定。図36(A)は、Cas9二本鎖切断によって誘導されるNHEJによる、U2OS細胞におけるEGFP破壊の模式図を提供している。図36(B)は、RNAiMAXを用いる、(-30)dGFP-Cas9と複合体化したEGFPをターゲット化するsgRNAまたはオフターゲットsgRNAの送達を、プラスミドトランスフェクションの正のコントロール(橙色)と併せて示している。図36(C)は、EGFP蛍光の破壊が細胞毒性の結果ではないという確認を、サンプルをTO-PRO-3 live/dead染色(Life Technologies, Carlsbad CA)によって処置し、もたらされる細胞をフローサイトメトリーによって分析することによって提供している。図36(D)は、細胞透過化性だが完全には膜溶解性でない界面活性剤(0.5%Tween)の追加によるTO-PRO-3染色の試験を示している。
Cas9:sgRNAの機能的な送達の最適化。図37(A)において、2つの試験された構築物のカチオン性脂質によって媒介される送達効率は、よりアニオン性の(-30)dGFP-NLS-Cas9が、自然のCas9と比較して、低い蛋白質およびsgRNA濃度でのより効率的な送達を容易にするということを示している。図37(B)は、蛋白質およびsgRNA濃度の関数として、(-30)dGFP-NLS-Cas9の送達最適化を示している。図37(C)は、蛋白質およびsgRNA濃度の関数として、いずれかの融合体またはタグ無しのCas9蛋白質の送達を示している。図37(D)は、(-30)dGFP-NLS-Cas9および自然のCas9のRNAiMAXによって媒介される送達のための最適なsgRNA対蛋白質比を示している。エラーバーは、異なる日に実施された3つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
sgRNAおよびCas9濃度両方の関数としての、機能的なCas9送達にNLSおよび/または(-30)dGFPが及ぼす効果。EGFP遺伝子破壊が、3つの固定されたsgRNA濃度10nM(図38(A))、25nM(図38(B))、および50nM(図38(C))において、グラフに示されている各種蛋白質濃度と併せて測定された。送達は0.8μLのRNAiMAXを用いて実施され、EGFP蛍光シグナルの喪失について48時間後にFACSによってアッセイされた。
Cas9:sgRNA送達効率および細胞毒性にRNAiMAXおよびLipofectamine 2000が及ぼす効果。図39(A)においては、RNAiMAXまたはLipofectamine 2000いずれかによって16時間処置されたU2OSのEGFPレポーター細胞において、異なるCas9蛋白質濃度と100nMのEGFPのsgRNAの定常用量とにおけるEGFP遺伝子破壊が示されている。16時間後に培地が取り除かれ、蛋白質送達処置後48~72時間のアッセイのエンドポイントまで、新鮮な培地が細胞に添加された。生細胞集団はFACSによってTO-PRO-3 Live/Dead染色を用いて決定された。図39(B)は、Lipofectamine 2000用量の関数として、U2OS細胞へのCas9:sgRNA送達について毒性プロファイルを示す。図39(C)は、RNAiMAX用量の関数として細胞に対する毒性プロファイルを提供する。エラーバーは、異なる日に実施された3つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
蛋白質およびsgRNAの各種濃度における、NTF3遺伝子をターゲット化するdCas9-VP64送達の最適化。HEK293T細胞が、dCas9-VP64活性化因子とNTF3をターゲット化するgRNAg2または全ての6つのNTF3をターゲット化するsgRNAの混合物いずれかとによって16時間、かつ0.8μLのRNAiMAXによって、48ウェルプレートフォーマットで処置された(275μLの終体積)。NTF3のmRNAレベルがqRT-PCRによって決定され、GAPDHのものに対して正規化された。エラーバーは、異なる日に実施された6つの生物学的レプリケートからの標準偏差を反映している。
モック処置、Cas9プラスミドおよびsgRNAのリニアなDNAのPCR産物のトランスフェクション、またはカチオン性脂質によって媒介される蛋白質:sgRNA送達いずれかによって処置された数個のヒト遺伝子のインデル頻度(ハイスループットシーケンシングによって測定された)が図示されている。モック処置には、EGFPをターゲット化するsgRNAのカチオン性脂質によって媒介される蛋白質:sgRNA送達が、3つのヒト遺伝子をターゲット化するsgRNAの代わりに関わった。図41(A)は、オンターゲットおよびオフターゲットインデル頻度をCLTA遺伝子について示している。図41(B)は、オンターゲットおよびオフターゲットインデル頻度をEMX遺伝子について提供している。図41(C)は、オンターゲットおよびオフターゲットインデル頻度をVEGF遺伝子について実証している。各オンおよびオフターゲットサンプルは一度シーケンシングされ、>10,000個の配列がオンターゲットサンプルあたり分析され、平均>111,000個の配列がオフターゲットサンプルあたり分析された(表2)。
マウス胚性幹細胞へのCas9エンドヌクレアーゼの送達。図42(A)は、Cas9蛋白質およびRNAiMAXによって処置されたがsgRNAによって処置されなかった浮遊スフィア(コントロール)が強いGFP蛍光を保持し(右)、一方、Cas9:sgRNAおよびRNAiMAXによって処置されたものが減少したGFP蛍光を見せた(左)ということを示している。スケールバーは100μmである。図42(B)は細胞接着後のコントロール前駆細胞を示しており、実質的に(virtualy)全てのコントロール前駆細胞はGFP陽性であった(右パネル)。Cas9:sgRNA処置はGFP発現の有意な低減につながり(左パネル)、多くの前駆細胞は細胞接着後に完全なGFPノックダウンを示した(矢印)。スケールバーは20μmである。図42(C)は、イメージング後に集められた幹細胞のT7EIアッセイが、GFPレポーターの切断を確認することを示している。類似の遺伝子ターゲット改変効率が、カチオン性脂質によって媒介されるCas9:sgRNA送達ならびにCas9およびEGFPsgRNAプラスミドのトランスフェクションから観察された。
インビボの内在性遺伝子座において、Cas9ヌクレアーゼおよびsgRNAのカチオン性脂質によって媒介される蛋白質送達によって誘導されたゲノム改変。図43(A)は、マウス有毛細胞において、Cas9およびEGFPのsgRNAのカチオン性脂質によって媒介される送達後に改変された、EGFPオンターゲット遺伝子座のゲノムDNA配列の代表的な例を示す。示されている各例について、未改変ゲノム部位は最初の配列であり、欠失を含有する最も豊富な8つの配列と挿入を含有する3つの配列とが続く。各配列の前の数はシーケンシングカウントを示している。sgRNAターゲット部位は太字、緑色で下線を付されている。挿入および欠失は赤色で示されている。PAM部位が青色で示されている。図43(B)は、マウス有毛細胞内のEMXオンターゲット部位について図42(A)と同一の分析を示している。図43(A)に示されている配列は、上から下へ、配列番号223~236に対応し、図43(B)に示されている配列は、上から下へ、配列番号237~250に対応する。
本発明は、超荷電蛋白質、カチオン性ポリマー、および/またはカチオン性脂質の1つまたは2つ以上と機能的なエフェクター蛋白質を結びつけることによる、細胞への機能的なエフェクター蛋白質(例えばヌクレアーゼ、リコンビナーゼ、およびCas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体、例えば、Cas9ニッカーゼおよびデアミナーゼ、遺伝子編集酵素、転写抑制因子および活性化因子、エピジェネティック修飾因子などへのCas9融合体を包含する))の送達のための、複合体、組成物、調製物、キット、システム、および関連する方法を提供する。典型的には、機能的なエフェクター蛋白質は、細胞の内部に送達されて、例えば細胞内で生物学的効果(例えば、ゲノムターゲット配列の切断またはターゲット遺伝子の発現の調節)を引き起こす。いくつかの態様において、生物学的効果は、細胞が見いだされる対象に対して治療上の利益を行使する。機能的なエフェクター蛋白質の送達のための複合体、組成物、調製物、システム、キット、および関連する方法は、例えば、研究または治療目的のために細胞を操作する文脈で、細胞内にエフェクター蛋白質を導入することに有用である。本明細書において提供される機能的なエフェクター蛋白質の送達のための組成物、調製物、システム、キット、および関連する方法は、改善した有効性および低減された細胞毒性、ならびに調製の容易さを現行の技術と比較して示す。本明細書において提供される組成物、調製物、システム、キット、および関連する方法を用いるTALENまたはCas9蛋白質(またはそのバリアントまたは融合体)などの部位特異的な蛋白質の送達は、インビトロまたはインビボのホスト細胞のゲノムのターゲット化された操作/改変を可能とし、一方で、より侵襲的な送達法(例えば、部位特異的な蛋白質をコードするベクターのウイルス送達)の使用を回避する。
いくつかの態様において、本発明の技術は、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を送達するために超荷電蛋白質を用いる。ある種の態様において、超荷電蛋白質は操作された蛋白質である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は天然に存在する超荷電蛋白質である。本発明のいくつかの側面は、超荷電蛋白質が細胞によってエンドサイトーシスされ、超荷電蛋白質と結びつき得る機能的なエフェクター蛋白質が超荷電蛋白質と一緒に細胞によって有効に取り込まれ、かかる機能的なエフェクター蛋白質が細胞内取り込み後にそれらの生物学的機能を保持する(例えば、それらがゲノムターゲット部位を切断もしくは改変するか、またはターゲット遺伝子の転写を調節する能力があるという点で)という認識に基づく。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)と結びついた超荷電蛋白質を含む本明細書において提供される組成物は、治療薬、診断剤、または研究ツールとして有用である。いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼまたは転写因子)は、例えば、疾患または障害と結びついた遺伝子をターゲット化するという点で治療活性であり得る。いくつかの態様において、超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質(例えばヌクレアーゼまたは転写因子)を含む本明細書において提供される組成物が用いられて、細胞内の遺伝子の発現を調節するか、または細胞内の生物学的経路(例えば、シグナル伝達経路、代謝経路)を調節する。いくつかの態様において、細胞は、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を導入するために本明細書に記載される本発明組成物と接触させられる。いくつかの態様において、本発明組成物は、対象内の細胞内に(例えば、疾患または障害と結びついた細胞内に)機能的なエフェクター蛋白質を導入するために、その必要がある対象に投与される。本開示のいくつかの側面に従う機能的なエフェクター蛋白質の送達のための好適な細胞および細胞型は、ヒト細胞、哺乳類細胞、T細胞、ニューロン、幹細胞、前駆細胞、血球、線維芽細胞、上皮細胞、新生物細胞、および腫瘍細胞を包含するが、これに限定されない。
超荷電蛋白質
本発明への使用のための超荷電蛋白質は、蛋白質の表面の保存されていないアミノ酸をより極性のまたは荷電したアミノ酸残基に変化させることによって生成し得る。ある種の態様において、蛋白質の表面の保存されていないアミノ酸は変異導入されて、生理pH(pH約7.4)で正に荷電したアミノ酸になる。改変されるべきアミノ酸残基は、疎水性で、親水性で、荷電して、またはその組み合わせであり得る。超荷電蛋白質は、蛋白質を超荷電させるための蛋白質への荷電部分の取り付けによってもまた生成し得る。超荷電蛋白質は、高頻度に凝集に対して耐性であり、リフォールディングする増大した能力を有し、不適切なフォールディングに対して抵抗力があり、改善した可溶性を有し、広範囲の条件(熱または界面活性剤の存在などの変性条件を包含する)で一般的により安定である。
本開示の側面に従う使用に好適な超荷電蛋白質は当分野において公知であり、限定無しに、国際PCT特許出願PCT/US07/70254(2007年6月1日出願、2007年12月13日にWO2007/143574として公開)、国際PCT出願PCT/US09/041984(2009年4月28日出願、2009年11月5日にWO2009/134808として公開)、および国際PCT出願PCT/US10/001250(2010年4月28日出願、2010年11月11日にWO2010/129023として公開)に開示されている超荷電蛋白質を包含し、そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は操作された超荷電蛋白質である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は天然に存在する超荷電蛋白質、例えば国際PCT出願PCT/US10/001250(2010年4月28日出願、2010年11月11日にWO2010/129023として公開)に開示されている天然の超荷電蛋白質であり、そのそれぞれは参照によって本明細書に組み込まれる。いくつかの態様において、操作されたまたは天然に存在する超荷電蛋白質は、0.8よりも大きい(例えば≧0.85、≧0.9、≧0.95、≧1、≧1.1、≧1.2、≧1.3、≧1.4、≧1.5、≧1.6、≧1.7、≧1.8、≧1.9、≧2、≧2.5、≧3、≧4、≧5、≧6、≧7、≧8、または≧10)電荷:分子量比を示す。
使用される超荷電蛋白質は植物、動物、および/または微生物のいずれかの種に由来し得る。ある種の態様において、超荷電蛋白質は哺乳類蛋白質である。ある種の態様において、超荷電蛋白質はヒト蛋白質である。ある種の態様において、蛋白質は、典型的には研究に用いられる生物に由来する。例えば、改変されるべき蛋白質は霊長類(例えば、類人猿、サル)、げっ歯類(例えば、ウサギ、ハムスター、アレチネズミ)、ブタ、イヌ、ネコ、魚類(例えばDanio rerio)、線虫(例えばC.elegans)、酵母(例えばSaccharomyces cerevisiae)、または細菌(例えばE.coli)からであり得る。ある種の態様において、蛋白質は非免疫原性である。ある種の態様において、蛋白質は非抗原性である。ある種の態様において、蛋白質は本来の生物活性を有さないか、または生物活性を有さないように改変されている。ある種の態様において、蛋白質はそのターゲット化能力に基づいて選ばれる。ある種の態様において、蛋白質は緑色蛍光蛋白質である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は超荷電グルタチオンSトランスフェラーゼ(GST)である。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は超荷電ストレプトアビジンである。
いくつかの態様において、正味の総電荷を増大させるようにまたは蛋白質表面上の荷電残基の合計数を増大させるように改変された超荷電蛋白質が用いられる。ある種の態様において、超荷電蛋白質の理論上の正味電荷は、未改変蛋白質と比較して少なくとも+1、少なくとも+2、少なくとも+3、少なくとも+4、少なくとも+5、少なくとも+10、少なくとも+15、少なくとも+20、少なくとも+25、少なくとも+30、少なくとも+35、または少なくとも+40だけ増大している。ある種の態様において、超荷電蛋白質の理論上の正味電荷は、生理pH(すなわち約7.4)において少なくとも+1、少なくとも+2、少なくとも+3、少なくとも+4、少なくとも+5、少なくとも+10、少なくとも+15、少なくとも+20、少なくとも+25、少なくとも+30、少なくとも+35、または少なくとも+40である。
他の態様(例えば、カチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーの使用が関わるもの)において、正味の総電荷を減少させるようにまたは蛋白質表面上の荷電残基の合計数を減少させるように改変された超荷電蛋白質が用いられる。ある種の態様において、超荷電蛋白質の理論上の正味電荷は、未改変蛋白質と比較して少なくとも-1、少なくとも-2、少なくとも-3、少なくとも-4、少なくとも-5、少なくとも-10、少なくとも-15、少なくとも-20、少なくとも-25、少なくとも-30、少なくとも-35、少なくとも-40、少なくとも-45、または少なくとも-50だけ減少している(「マイナス」または「負」は「-」によって表される)。ある種の態様において、超荷電蛋白質の理論上の正味電荷は少なくとも-1、少なくとも-2、少なくとも-3、少なくとも-4、少なくとも-5、少なくとも-10、少なくとも-15、少なくとも-20、少なくとも-25、少なくとも-30、少なくとも-35、少なくとも-40、少なくとも-45、または少なくとも-50である。
いくつかの例示的な超荷電蛋白質が、本発明の技術を例示するために本明細書に記載される一方で、本開示はこの点で限定されない。当業者は、本開示に基づいて、細胞に機能的なエフェクター蛋白質を送達するための追加の好適な超荷電蛋白質を確かめる能力があるであろう。いくつもの天然に存在する蛋白質が、好適な超荷電蛋白質を生成するために改変され得る。かかる蛋白質中の望まれる改変は、当分野において公知のいずれかの技術を用いて成就され得る。蛋白質配列中のかかる変化を導入するための組み換えDNA技術は当分野において周知である。ある種の態様において、改変は、蛋白質をコードするポリヌクレオチドの部位特異的変異導入によってなされる。変異を導入するための他の技術は、Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Ed., ed. by Sambrook, Fritsch, and Maniatis (Cold Spring Harbor Laboratory Press: 1989)、the treatise, Methods in Enzymology (Academic Press, Inc., N.Y.)、Ausubel et al., Current Protocols in Molecular Biology (John Wiley & Sons, Inc., New York, 1999)において論じられており、そのそれぞれは参照によって本明細書に組み込まれる。
超荷電蛋白質はさらに改変され得る。超荷電蛋白質を包含する蛋白質は当業者に公知の技術を用いて改変され得る。例えば、超荷電蛋白質は化学的にまたは生物学的に改変され得る。1つまたは2つ以上のアミノ酸が、一次配列から追加、欠失、または変化させられ得る。例えば、ポリヒスチジンタグまたは他のタグが、蛋白質の精製を補助するために超荷電蛋白質に追加され得る。他のペプチドまたは蛋白質が、蛋白質の生物学的、生化学的、および/または生物物理学的特性を変化するために超荷電蛋白質に追加され得る。例えば、エンドソーム溶解性ペプチドが超荷電蛋白質の一次配列に追加され得、または、ターゲット化ペプチドが超荷電蛋白質の一次配列に追加され得る。超荷電蛋白質の他の改変は翻訳後修飾(例えば、グリコシル化、リン酸化、アシル化、脂質修飾、ファルネシル化、アセチル化、蛋白質加水分解など)を包含するが、これに限定されない。ある種の態様において、超荷電蛋白質は、その免疫原性を低減するために改変される。ある種の態様において、超荷電蛋白質は、細胞に機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)を送達するその能力を向上させるために改変される。ある種の態様において、超荷電蛋白質はポリマーにコンジュゲーションされる。例えば、蛋白質は、ポリエチレングリコール(PEG)ポリマーに蛋白質をコンジュゲーションすることによってPEG化され得る。他の方法が、蛋白質配列の改変無しに超荷電蛋白質を生成させるために用いられ得る。例えば、正味電荷を変化する部分が、超荷電を達成するための表面電荷を提供するために(例えば、化学または酵素反応によって)蛋白質に取り付けられ得る。ある種の態様において、Shaw et al., Protein Science 17: 1446, 2008に記載されている蛋白質を改変する方法が用いられて、本開示の本発明の技術に用いられる蛋白質を超荷電させる。
本開示の技術による使用に好適な数個の異なる超荷電蛋白質のバリアントの設計および作製が、国際PCT特許出願PCT/US07/70254(2007年6月1日出願、2007年12月13日にWO2007/143574として公開)、国際PCT出願PCT/US09/041984(2009年4月28日出願、2009年11月5日にWO2009/134808として公開)、および国際PCT出願PCT/USlO/001250(2010年4月28日出願、2010年11月11日にWO2010/129023として公開)に記載されており、そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。それらに記載された開示された超荷電蛋白質のいくつかは、より安定でありかつそれらの生物学的機能(例えば、蛍光蛋白質の場合ではそれらの蛍光)を保持するということが示されている。例えば、Aequorea victoriaからの緑色蛍光蛋白質(GFP)はGenBank登録番号P42212に記載されており、参照によって本明細書に組み込まれる。この野生型GFPのアミノ酸配列は以下の通りである。
MSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTFSYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITHGMDELYK(配列番号14)
野生型GFPは-7の理論上の正味電荷を有する。-29、-30、-25、+15、+25、+36、+48、および+49の理論上の正味電荷を有するバリアントが、例えば国際PCT出願PCT/USlO/001250(2010年4月28日出願、2010年11月11日にWO2010/129023として公開)において報告されており、その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。+36GFPを95℃まで熱した後でさえも、バリアント蛋白質の100%が可溶性であり、蛋白質はその蛍光の≧70%を保持する。
本開示のいくつかの側面は、+36GFPがターゲット細胞に機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)を効率的に送達し、そのように送達されたエフェクター蛋白質がそれらの生物学的機能を保持するという発見に基づく。そのため、少なくとも+15、少なくとも+25、少なくとも+30、少なくとも+35、または少なくとも+40の正味電荷を有するGFPまたは他の蛋白質は、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を導入することに特に有用であると考えられる。
いくつかの態様において、特に有用な超荷電蛋白質は、+36GFPのものと類似の電荷分布または表面電荷密度を可能とする蛋白質である。さらに、いくつかの態様において、特に有用な超荷電蛋白質は、超荷電によって容易に撹乱されない安定なフォールディング構造を示す蛋白質であり、それゆえに超荷電蛋白質が良くフォールディングされることを可能とする。いくつかの態様において、特に有用な超荷電蛋白質は、本明細書または国際PCT特許出願PCT/US07/70254(2007年6月1日出願、2007年12月13日にWO2007/143574として公開)、国際PCT出願PCT/US09/041984(2009年4月28日出願、2009年11月5日にWO2009/134808として公開)、および国際PCT出願PCT/US10/001250(2010年4月28日出願、2010年11月11日にWO2010/129023として公開)(そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)に記載される超荷電蛋白質と構造的特徴を共有する蛋白質である(例えば球状構造またはβバレル構造)。蛋白質フォールディング、蛋白質フォールド構造安定性、および異なって荷電したアミノ酸による特異的なアミノ酸の置換による蛋白質フォールディングの撹乱、電荷分布、ならびに表面電荷密度は、本明細書において提供される方法およびアルゴリズムならびに当業者に公知の他のものによってインシリコモデリングされ得る。従って、問題の超荷電蛋白質が良くフォールディングするかどうかは慣例の実験法のみから当業者に明らかになるであろう。それゆえに、当業者は、所与の超荷電蛋白質が本明細書に記載される技術に従う機能的なエフェクター蛋白質の細胞内送達に有用であるかどうかを、所与のアミノ酸配列から同定する能力があるであろう。
GFPのいくつかの例示的な好適なバリアントは、限定無しに以下を包含する。
+15GFP:
MGHHHHHHGGASKGERLFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVRGEGEGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPEGYVQERTISFKKDGTYKTRAEVKFEGRTLVNRIELKGRDFKEKGNILGHKLEYNFNSHNVYITADKRKNGIKANFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRNHYLSTRSALSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGITHGMDELYK(配列番号15)
+25GFP:
MGHHHHHHGGASKGERLFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGTYKTRAEVKFEGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHNVYITADKRKNGIKANFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRNHYLSTRSALSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGITHGMDELYK(配列番号16)
+36GFP:
MGHHHHHHGGASKGERLFRGKVPILVELKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFEGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRNHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGIKHGRDERYK(配列番号17)
+42GFP:
MGHHHHHHGGRSKGKRLFRGKVPILVELKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFEGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRKHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGIKHGRKERYK(配列番号18)
+48GFP:
MGHHHHHHGGRSKGKRLFRGKVPILVKLKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFKGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLAKHYQQNTPIGRGPVLLPRKHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGIKHGRKERYK(配列番号19)
+49GFP:
MGHHHHHHGGRSKGKRLFRGKVPILVKLKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFKGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLAKHYQQNTPIGRGPVLLPRKHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLKEFVTAAGIKHGRKERYK(配列番号20)
(-)30GFP:
MGHHHHHHGGASKGEELFDGVVPILVELDGDVNGHEFSVRGEGEGDATEGELTLKFICTTGELPVPWPTLVTTLTYGVQCFSDYPDHMDQHDFFKSAMPEGYVQERTISFKDDGTYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNFNSHDVYITADKQENGIKAEFEIRHNVEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDDHYLSTESALSKDPNEDRDHMVLLEFVTAAGIDHGMDELYK(配列番号21)
上の配列がN末端His6タグを包含することと、かかるタグ無しまたは異なるタグ有りの配列もまた好適であるということとは当業者には明らかであろう。
細胞への送達後の機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の生物学的機能を促進するためには、細胞内取り込み後の機能的なエフェクター蛋白質のエンドソーム脱出を向上させることが望ましくあり得る。超荷電蛋白質または機能的なエフェクター蛋白質が、エンドソーム分解またはエンドソームの溶解を向上させることが公知の蛋白質、ペプチド、または他の実体と融合されるかまたは結びつけられ得る。ある種の態様において、ペプチドはヘマグルチニン2(HA2)ペプチドであり、これはエンドソーム分解を向上させることが公知である。ある種の特定の態様において、HA2ペプチドは超荷電GFP(例えば、+36GFP)に融合する。ある種の特定の態様において、融合した蛋白質は以下の配列である。
+36GFP-HA2
MGHHHHHHGGASKGERLFRGKVPILVELKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFEGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRNHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGIKHGRDERYKGSAGSAAGSGEFGLFGAIAGFIENGWEGMIDG(配列番号22)
ある種の態様において、エンドソーム溶解性ペプチドはメリチンペプチド(GIGAVLKVLTTGLPALISWIKRKRQQ。配列番号23)である(Meyer et al., JACS 130(11): 3272-3273, 2008。これは参照によって本明細書に組み込まれる)。ある種の態様において、メリチンペプチドは1、2、3、4、または5つのアミノ酸置換、欠失、および/または追加によって改変される。ある種の態様において、メリチンペプチドは配列CIGAVLKVLTTGLPALISWIKRKRQQ(配列番号24)である。ある種の特定の態様において、メリチンペプチドは超荷電GFP(例えば、+36GFP)に融合する。
ある種の態様において、エンドソーム溶解性ペプチドはペネトラチンペプチド(RQIKIWFQNRRMKWKK-アミド。配列番号25)、ウシPrP(1-30)ペプチド(MVKSKIGSWILVLFVAMWSDVGLCKKRPKP-アミド。配列番号26)、MPGΔNLSペプチド(K->S置換のため、機能的な核局在配列を欠く)(GALFLGWLGAAGSTMGAPKSKRKV。配列番号27)、TP-10ペプチド(AGYLLGKINLKALAALAKKIL-アミド。配列番号28)、および/またはEB1ペプチド(LIRLWSHLIHIWFQNRRLKWKKK-アミド。配列番号29)である(Lundberg et al., 2007, FASEB J. 21:2664。参照によって本明細書に組み込まれる)。ある種の態様において、ペネトラチン、PrP(1-30)、MPG、TP-10、および/またはEB1ペプチドは、1、2、3、4、または5つのアミノ酸置換、欠失、および/または追加によって改変される。ある種の特定の態様において、PrP(1-30)、MPG、TP-10、および/またはEB1ペプチドは超荷電GFP(例えば、+36GFP)に融合する。いくつかの態様において、Aureinペプチドは超荷電蛋白質に融合する。
他のペプチドまたは蛋白質もまた、超荷電蛋白質、または超荷電蛋白質と機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)とを含む融合蛋白質に融合され得る。例えば、ターゲット化ペプチドが、特定の細胞型に機能的なエフェクター蛋白質を選択的に送達するために超荷電蛋白質に融合され得る。機能的なエフェクター蛋白質の細胞内取り込みを向上させるペプチドまたは蛋白質もまた用いられ得る。ある種の態様において、超荷電蛋白質に融合されたペプチドはペプチドホルモンである。ある種の態様において、超荷電蛋白質に融合されたペプチドはペプチドリガンドである。
本明細書において詳細に記載される例示的な超荷電蛋白質は本開示を限定することは意味されていない。他の超荷電蛋白質が、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の細胞内送達のために用いられ得、他のGFP式蛍光蛋白質を包含するが、これに限定されないということを当業者は認めるであろう。ある種の態様において、超荷電蛋白質は青色蛍光蛋白質の超荷電バージョンである。ある種の態様において、超荷電蛋白質はシアン蛍光蛋白質の超荷電バージョンである。ある種の態様において、超荷電蛋白質は黄色蛍光蛋白質の超荷電バージョンである。例示的な好適な蛍光蛋白質は、エンハンスト緑色蛍光蛋白質(EGFP)、AcGFP、TurboGFP、Emerald、Azami-Green、ZsGreen、EBFP、Sapphire、T-Sapphire、ECFP、mCFP、Cerulean、CyPet、AmCyan1、Midori-Ishi-Cyan、mTFP1(Teal)、エンハンスト黄色蛍光蛋白質(EYFP)、Topaz、Venus、mCitrine、YPet、PhiYFP、ZsYellow1、mBanana、Kusabira-Orange、mOrange、dTomato、dTomato-Tandem、DsRed、DsRed2、DsRed-Express(T1)、DsRed-Monomer、mTangerine、mStrawberry、AsRed2、mRFP1、JRed、mCherry、HcRed1、mRaspberry、HcRed1、HcRed-Tandem、mPlum、およびAQ143を包含するが、これに限定されない。
超荷電であり、かつ例えば本明細書に開示される機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の送達に用いられ得るまだ他の蛋白質は、ヒストン構成物またはヒストン様蛋白質、高移動度グループ蛋白質(HMG)、酵素(例えば、アミラーゼ、ペクチナーゼ、ヒドロラーゼ、プロテアーゼ、グルコースイソメラーゼ、リパーゼ、フィターゼ、アルグルセラーゼ、イミグルセラーゼ、アガルシダーゼベータ、α-1-イズロニダーゼ、酸α-グルコシダーゼ、およびイズロン酸-2-スルファターゼ、N-アセチルガラクトサミン-4-スルファターゼを包含する。
蛋白質以外の荷電ポリマーもまた、機能的なエフェクター蛋白質を送達するために用いられ得る。加えて、本明細書により詳細に記載される通り、カチオン性脂質および脂質様材料、さらにはカチオン性ポリマーもまた、機能的なエフェクター蛋白質を送達するために用いられ得る。好適なカチオン性脂質、脂質様材料、およびカチオン性ポリマーは本明細書に開示されており、追加の好適な脂質および脂質様材料は当業者に公知である(例えば、Akinc et al., Nature Biotechnology 26, 561-569 (2008)に記載されているもの参照。その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。
超荷電蛋白質を用いる機能的なエフェクター蛋白質の送達
本発明は、インビボ、エクスビボ、またはインビトロの細胞への機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の送達のためのシステムおよび方法を提供する。かかるシステムおよび方法には、複合体または融合蛋白質を形成するための超荷電蛋白質との機能的なエフェクター蛋白質の結びつきと、細胞への複合体または融合蛋白質の送達とが典型的には関わる。いくつかの態様において、超荷電蛋白質によって送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質は治療活性を有する。いくつかの態様において、細胞への複合体または融合蛋白質の送達には、その必要がある対象に機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む複合体または融合蛋白質を投与することが関わる。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)それ自体は細胞に入る能力がなくあり得るが、例えば共有結合または非共有結合的な相互作用を介して超荷電蛋白質と結びつけられたときには細胞に入る能力がある。いくつかの態様において、超荷電蛋白質に共有結合した機能的なエフェクター蛋白質を包含する組成物が提供される。いくつかの態様において、組成物は、ペプチド結合を介して(例えば、直接的な融合を介してまたはペプチドリンカーを介して)超荷電蛋白質に融合した機能的なエフェクター蛋白質を包含する。いくつかの態様において、組成物は、非共有結合的な相互作用によって超荷電蛋白質に結合した機能的なエフェクター蛋白質を包含する。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、機能的なエフェクター蛋白質が細胞に入ることを可能とするために利用される。いくつかの態様において、超荷電蛋白質に結びついた細胞に送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質は、例えば細胞内プロテアーゼ(例えばエンドソームプロテアーゼ)によるリンカーペプチドの切断によって、または特定の細胞内微小環境内における(例えばエンドソーム内における)超荷電蛋白質からの機能的なエフェクター蛋白質の解離によって、細胞への送達後に超荷電蛋白質から分離される。いくつかの態様において、本開示によって提供されるシステムまたは方法によって送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質は、治療活性を有する。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)は、本明細書において提供されるシステム、組成物、または方法によってインビボ、エクスビボ、またはインビトロで細胞に送達される。いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質は、ターゲット細胞内で生物学的機能を実行する能力がある蛋白質、例えば、その基質に結合してターゲット細胞内で酵素反応を触媒する能力がある酵素、例えば、ターゲット細胞内の核酸分子に結合して切断する能力があるヌクレアーゼ、またはターゲット細胞のゲノムと相互作用して細胞内のターゲット遺伝子の転写を活性化または阻害する能力がある転写因子である。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質と超荷電蛋白質との融合体を生成するための方法は、機能的な蛋白質および超荷電蛋白質のコード配列、さらには任意でペプチドリンカーをインフレームで含有する発現核酸構築物の生成、培養中の原核または真核細胞内でのかかる組み換え融合蛋白質の発現、融合蛋白質の融合蛋白質の抽出および精製を包含する。いくつかの態様において、核酸構築物は発現ベクター(例えば、細菌ホスト内での増数および原核または真核細胞内での発現に好適なベクター)の形態で生成される。
いくつかの態様において、融合蛋白質発現に好適なベクターは、両方のコード配列が互いにインフレームであることをもたらすクローニング手法によって、真核生物および/または原核生物プロモーターのコントロール下に超荷電蛋白質をコードするヌクレオチド配列を包含するクローニングベクター中への、送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質をコードするヌクレオチド配列のクローニングによって生成される。いくつかの態様において、クローニングベクターは、超荷電蛋白質をコードするヌクレオチド配列と、リンカーおよび超荷電蛋白質とインフレームで蛋白質をコードするヌクレオチド配列を挿入するために有用な制限部位との間に、ペプチドリンカーをコードするヌクレオチド配列を包含する。いくつかの態様において、クローニングベクターは、原核もしくは真核細胞内での融合蛋白質の発現を向上させるか、またはかかる細胞からの発現された融合蛋白質の精製を容易にする追加の配列をさらに包含する(例えば、融合蛋白質をコードする転写物を安定化する配列、例えばポリAシグナル、スプライシング可能なイントロン、インフレームペプチドまたは蛋白質ドメインタグ(例えば、Argタグ、カルモジュリン結合ペプチドタグ、セルロース結合ドメインタグ、DsbAタグ、c-mycタグ、グルタチオンS-トランスフェラーゼタグ、FLAGタグ、HATタグ、Hisタグ、マルトース結合蛋白質タグ、NusAタグ、Sタグ、SBPタグ、Strepタグ、またはチオレドキシンタグ)をコードする配列、または、発現構築物を保有および発現する細胞の同定をならびに/もしくはかかる細胞における発現のレベルを定量することを可能とする選択マーカーもしくはレポーターカセット)。融合蛋白質をクローニングおよび発現するための方法は当業者に周知である。例えばSambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Volume 1-3, CSHL Press (1989)、Gellissen et al., Production of recombinant proteins, Wiley-VCH, 2005参照。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質は、ターゲット細胞への送達のために超荷電GFP(例えば、+36GFPまたは-30GFP)と結びつけられる。超荷電蛋白質による高分子の送達におけるエンドソーム破壊の利益が以前に実証されており(Wadia et al., Nat. Med. 10, 310-315, 2004)、いくつかの態様において、向上したエンドソーム脱出を実現するための追加のステップが、本明細書において提供されるかまたは当分野において公知の通り実施される。高度に効率的な蛋白質内在化は、有効なエンドソーム放出とカップリングされたときに外来性蛋白質薬剤の要求される用量を最小化する可能性を有しており、研究ツールおよび治療薬開発のためのリードとしてのそれらの可能性を向上させる。
いくつかの態様において、超荷電蛋白質と結びついた機能的なエフェクター蛋白質を含む組成物は、単離および/または精製後にターゲット細胞に投与される。蛋白質単離法および技術は当業者に周知であり、例えばアフィニティークロマトグラフィーまたは免疫沈降を包含する。特定の機能的なエフェクター蛋白質、超荷電蛋白質、および/または融合蛋白質を単離および/または精製するための好適な方法は、それぞれの蛋白質の性質に依存するであろう。例えば、Hisタグ融合蛋白質はNiまたはCoイオンクロマトグラフィーによって難なく単離および精製され得、一方、他のペプチドもしくはドメインによってタグづけされた融合蛋白質またはタグ無し融合蛋白質は、他の良く確立された方法によって精製され得る。
本明細書において提供されるシステムまたは方法によるインビボ、エクスビボ、またはインビトロのターゲット細胞への送達に好適な機能的なエフェクター蛋白質は当業者には明らかであろう。例えば、DNA結合蛋白質(例えば転写因子およびヌクレアーゼ)、さらにはCas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)を包含する。
いくつかの態様において、本明細書において提供される方法、組成物、またはシステムは、細胞に治療用の機能的なエフェクター蛋白質を送達するために用いられる。治療用の蛋白質の例は、疾患または障害と結びついたゲノムアレルをターゲット化するヌクレアーゼおよびCas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)、ならびに有益な遺伝子を活性化するかまたは病原性の遺伝子を抑制する転写因子を包含するが、これに限定されない。
いくつかの態様において、Cas9は、細胞への送達のために超荷電蛋白質に融合される。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は正に荷電する。いくつかの態様において、Cas9に融合される超荷電蛋白質は(+36)GFPである。いくつかの態様において、Cas9と(+36)GFPとの融合体は(例えば、核局在シグナル(NLS)有りまたは無しおよび6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号30のアミノ酸配列を含むか、または(例えば、核局在シグナル(NLS)有りまたは無しおよび6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号30のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、もしくは少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、Cas9に融合される超荷電蛋白質は(-30)GFPである。いくつかの態様において、Cas9と(-30)GFPとの融合体は、(例えば、核局在シグナル(NLS)有りまたは無しおよび6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号31のアミノ酸配列を含むか、または(例えば、核局在シグナル(NLS)有りまたは無しおよび6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号31のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、もしくは少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。
機能的なエフェクター蛋白質およびカチオン性脂質の組成物
本開示のある種の側面は、例えば「裸の」蛋白質調製物を送達することと対比して、エフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の送達のためのカチオン性脂質の使用に関する。驚くべきことに、DNAおよびRNAなどの核酸の送達のために操作された既存のリポソーム送達試薬が、本明細書に記載される通り、インビトロおよびインビボ両方である種のエフェクター蛋白質(例えば、そのバリアントおよび融合体を包含するCas9蛋白質)を有効に送達するということが見いだされた。核酸送達は、過去20年間のリポソーム試薬の開発から大きく恩恵を受けて来た。カチオン性リポソーム製剤は、DNAおよびRNAトランスフェクションが基礎研究における慣例の技術になることを可能にし、治験においてさえも用いられている。リポソームの脂質二重層は、封入された核酸を分解から保護し、核酸の裸の調製物に結合し得る抗体による特異的な中和を予防し得る。重要なことに、エンドソーム成熟中におけるエンドソーム膜とのリポソームの融合は、カチオン性脂質によって送達されるカーゴ(積み荷)の高度に効率的なエンドソーム脱出を可能にし得る。他の非カチオン性だが可逆的にイオン化可能な脂質ナノ粒子製剤は、核酸の効率的な封入および送達を可能にし、一方、非特異的な静電気的相互作用および帰結の隔離を回避した。しかしながら、蛋白質は化学的に多様であり、そのため高度にアニオン性の核酸とは違って、リポソーム製剤は蛋白質の効率的な送達については同様な成功はしなかった。例えば、蛋白質はインビトロの再水和脂質によって非特異的に封入および送達され得る一方で、封入の有効性は蛋白質濃度に依存し、一般的に非効率的であり、それゆえに広汎な応用はなされなかった。本開示の側面は、アニオン性蛋白質または蛋白質複合体(核酸と結びついた蛋白質を包含する)が、核酸送達のためのカチオン性リポソーム試薬によって用いられる同じ静電気学によって駆動される封入を活用する能力があり得るという認識に関する。少ない蛋白質が、核酸のリン酸バックボーン中に見いだされる負電荷の密度を自然に備えている一方で、本明細書に記載される負の超荷電蛋白質または核酸などのアニオン性担体との翻訳融合(translational fusion)または非共有結合的な結びつきは、もたらされるエフェクター蛋白質または蛋白質複合体を充分にアニオン性にして、カチオン性リポソーム試薬によるかかる蛋白質カーゴの効率的な封入を駆動する。
いくつかの態様において、操作された超負荷電GFPとの結びつきまたは融合は、核酸をトランスフェクションするために普通に用いられるカチオン性脂質による培養哺乳類細胞内への蛋白質の効率的な封入および送達を駆動することができる。この手法は低いナノモル蛋白質濃度および血清の存在下でさえも有効であり、カチオン性ペプチドまたは蛋白質への融合を用いる蛋白質送達法よりも1,000倍まで効率的な機能的な蛋白質送達をもたらす。例に示されている通り、送達の有効性は、いくつかの態様において例えば融合タグの理論上の正味電荷に依存し、そのポピュラーな自然にアニオン性のペプチドタグ(例えば、3×FLAGおよびVP64)は同様にリポソーム蛋白質送達を可能にし得る。
例は、ポリアニオン性ガイドRNA(gRNA)と結びついたCas9ヌクレアーゼ蛋白質が、それらの普通のカチオン性リポソーム製剤によって哺乳類細胞内に機能的な形態で効率的に送達され得るということをさらに示す。なぜなら、いずれかの特定の理論によって束縛されることを求めるものではないが、gRNAは、別様にはカチオン性のCas9蛋白質とカチオン性脂質との間のポリアニオン性の仲介物質として作用すると信じられるからである。Cas9:gRNA複合体の送達は高度に効率的である(例えば、単一の処置からの80%までの改変)のみならず、プラスミドトランスフェクションと比較して顕著に高いゲノム改変特異性をもまたもたらし、>10倍高いオンターゲット:オフターゲット改変比を典型的にはもたらす。これは、多分、送達されるCas9:gRNA活性の一過的な性質が原因である。いくつかの態様において、Cas9:gRNA複合体の送達は、少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、11倍、12倍、13倍、14倍、15倍、20倍、または25倍以上高いオンターゲット:オフターゲット改変比をもたらす。例は、例えばマウスの内耳の有毛細胞に機能的なCreリコンビナーゼおよび機能的なCas9:gRNA複合体を送達することによって、この蛋白質送達手法がインビボで有効であり得るということをもまた実証している。
従って、本発明のいくつかの側面は、Cas9蛋白質(例えば、本明細書に記載される通り。例えば、下のCas9エフェクター蛋白質参照)と細胞の内部にCas9蛋白質を送達することができるカチオン性脂質とを含む組成物を提供する。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はgRNAと結びつき、これは例えば複合体にアニオン性電荷を提供し、それによって、Cas9:gRNA複合体がカチオン性脂質によって封入されることを可能とする。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はカチオン性脂質による有効な封入のためにgRNAと結びつく必要はなく、代わりに、本明細書に記載される負の超荷電蛋白質と結びつけられる。Cas9蛋白質が負の超荷電蛋白質と結びつけられるいくつかの態様において、Cas9蛋白質はgRNAともまた結びつけられる。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は野生型Cas9蛋白質、野生型Cas9蛋白質の断片、または野生型Cas9蛋白質のバリアントである。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はdCas9ドメイン(例えば、本明細書に記載される通り)を含む。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はdCas9ドメイン(例えば、本明細書に記載される通り)を含む融合蛋白質である。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はCas9ニッカーゼである。
他の態様において、(例えば、Cas9蛋白質以外の)エフェクター蛋白質とカチオン性脂質とを含む組成物が提供され、これが細胞の内部に(例えば細胞の核に)エフェクター蛋白質を送達することができる。エフェクター蛋白質は、天然に負に荷電しているか、正味の負の総電荷を有するように改変されるか、または本明細書に記載される負の超荷電蛋白質と結びつけられるかのいずれかである。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質は本明細書に記載されるいずれかのエフェクター蛋白質である。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質はリコンビナーゼ、例えば本明細書に記載されるいずれかのリコンビナーゼである。いくつかの態様において、リコンビナーゼはCreリコンビナーゼである。いくつかの態様において、Creリコンビナーゼは、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号32のアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、Creリコンビナーゼは、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号32のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、または少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、Creリコンビナーゼは超荷電蛋白質(例えば、+36GFPまたは-30GFP)に融合される。いくつかの態様において超荷電蛋白質に融合されたCreリコンビナーゼは(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号33もしくは(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号34のアミノ酸配列を含むか、または(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号33もしくは配列番号34のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、もしくは少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質はTALE蛋白質である(例えば、本明細書に記載される通り。例において提供されるものを包含する)。いくつかの態様において、TALE蛋白質はVP64転写活性化因子ドメイン(例えば、配列番号35)の1つまたは2つ以上を含む。いくつかの態様において、VP64転写活性化因子ドメインを有するTALE蛋白質は、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号36~39からなる群から選択されるアミノ酸配列をさらに含む。いくつかの態様において、VP64転写活性化因子ドメインを有するTALE蛋白質は、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号36~39からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、または少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、TALEエフェクター蛋白質は、(-30)GFPドメイン(例えば、配列番号21または配列番号40)、TALEドメインのN末端領域(例えば、配列番号41)、可変リピートドメイン(例えば、Maeder et al.,「Robust, synergistic regulation of human gene expression using TALE activators.」Nat. Methods. 2013; 10, 243-245において提供されている18.5merリピートドメイン)、C末端TALEドメイン(例えば、配列番号42)、VP64活性化ドメイン(例えば、配列番号35)、および任意で1つまたは2つ以上のリンカー(例えば、GGS(9)、配列番号252)をいずれかのドメインと任意で配列タグ(例えば6×His。配列番号253)との間に含む。
DNAおよびRNAなどのカーゴのリポソーム送達は、ターゲット化された細胞に毒性を誘導するということが公知である。一方で、本明細書に記載される本発明組成物は、驚くべきことに毒性無しでまたは低い毒性でインビトロおよびインビボ両方でそれらのカーゴを送達するということが見いだされた。例えば、いくつかの態様において、本明細書に記載されるCas9蛋白質または他のエフェクター蛋白質を含む組成物は、(例えば、インビトロまたはインビボの)細胞の集団に投与されたときに低い毒性を示す。いくつかの態様において、集団中の細胞の少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%が、Cas9蛋白質または他のエフェクター蛋白質とカチオン性脂質とを含む本発明組成物の投与後に生存可能である。細胞の集団に投与されたときに組成物の毒性を評価するための方法は当分野において周知であり、例に記載されるものを包含する。
Cre-6×His(6×Hisタグは下線):
MASNLLTVHQNLPALPVDATSDEVRKNLMDMFRDRQAFSEHTWKMLLSVCRSWAAWCKLNNRKWFPAEPEDVRDYLLYLQARGLAVKTIQQHLGQLNMLHRRSGLPRPSDSNAVSLVMRRIRKENVDAGERAKQALAFERTDFDQVRSLMENSDRCQDIRNLAFLGIAYNTLLRIAEIARIRVKDISRTDGGRMLIHIGRTKTLVSTAGVEKALSLGVTKLVERWISVSGVADDPNNYLFCRVRKNGVAAPSATSQLSTRALEGIFEATHRLIYGAKDDSGQRYLAWSGHSARVGAARDMARAGVSIPEIMQAGGWTNVNIVMNYIRNLDSETGAMVRLLEDGDGGSHHHHHH(配列番号32)
(-30)GFP:
MGASKGEELFDGVVPILVELDGDVNGHEFSVRGEGEGDATEGELTLKFICTTGELPVPWPTLVTTLTYGVQCFSDYPDHMDQHDFFKSAMPEGYVQERTISFKDDGTYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNFNSHDVYITADKQENGIKAEFEIRHNVEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDDHYLSTESALSKDPNEDRDHMVLLEFVTAAGIDHGMDELYK(配列番号40)
N末端TALEドメイン:
APKKKRKVGIHRGVPMVDLRTLGYSQQQQEKIKPKVRSTVAQHHEALVGHGFTHAHIVALSQHPAALGTVAVKYQDMIAALPEATHEAIVGVGKQWSGARALEALLTVAGELRGPPLQLDTGQLLKIAKRGGVTAVEAVHAWRNALTGAPLNL(配列番号41)
C末端TALEドメイン:
LESIVAQLSRPDPALAALTNDHLVALACLGGRPALDAVKKGLPHAPALIKRTNRRIPERTSHRVADHAQVVRVLGFFQCHSHPAQAFDDAMTQFGMSGGGS(配列番号42)
VP64活性化ドメイン:
GRADALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLGSDALDDFDLDML(配列番号35)
機能的なエフェクター蛋白質およびカチオン性ポリマーの組成物
本開示のある種の側面は、例えば「裸の」蛋白質調製物を送達することと対比して、エフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)の送達のためのカチオン性ポリマーの使用に関する。カチオン性脂質と同じく、本開示の側面は、アニオン性蛋白質または蛋白質複合体(核酸と結びついた蛋白質を包含する)が、機能的なエフェクター蛋白質の送達のために、カチオン性ポリマーによる静電気学によって駆動される封入および/または結びつきを活用し得るという認識に関する。少ない蛋白質が、核酸のリン酸バックボーン中に見いだされる負電荷の密度を自然に備えている一方で、本明細書に記載される負の超荷電蛋白質または核酸などのアニオン性担体との翻訳融合または非共有結合的な結びつきは、もたらされるエフェクター蛋白質または蛋白質複合体を充分にアニオン性にして、カチオン性ポリマーによるかかる蛋白質カーゴの効率的な封入/結びつきを駆動する。
いくつかの態様において、操作された超負荷電GFPとの結びつきまたは融合は、カチオン性ポリマーによる効率的な封入/結びつきと培養哺乳類細胞内への蛋白質の送達とを駆動することができる。いくつかの態様において、ポリアニオン性のガイドRNA(gRNA)と結びついたCas9蛋白質は、カチオン性ポリマーを用いて哺乳類細胞内に機能的な形態で効率的に送達され得る。従って、いくつかの態様において、Cas9蛋白質とカチオン性ポリマーとを含む組成物が提供され、Cas9蛋白質はgRNAと結びつき、組成物は細胞の内部にCas9蛋白質を送達することができる。いくつかの態様において、カチオン性ポリマーを用いるCas9:gRNA複合体の送達は、Cas9蛋白質のプラスミドトランスフェクションと比較して少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、11倍、12倍、13倍、14倍、15倍、20倍、または25倍以上高いオンターゲット:オフターゲット改変比をもたらす。
従って、本開示のいくつかの側面は、Cas9蛋白質(例えば、本明細書に記載される通り。例えば、下のCas9エフェクター蛋白質参照)と細胞の内部にCas9蛋白質を送達することができるカチオン性ポリマーとを含む組成物を提供する。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はgRNAと結びつけられ、これが例えば複合体にアニオン性電荷を提供し、それによってCas9:gRNA複合体がカチオン性ポリマーによって封入および/または結びつかれることを可能とする。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はカチオン性脂質による有効な封入および/または結びつきのためにgRNAと結びつく必要はなく、代わりに、本明細書に記載される負の超荷電蛋白質と結びつけられる。Cas9蛋白質が負の超荷電蛋白質と結びつけられるいくつかの態様において、Cas9蛋白質はgRNAともまた結びつけられる。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は野生型Cas9蛋白質、野生型Cas9蛋白質の断片、または野生型Cas9蛋白質のバリアントである。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は(例えば、本明細書に記載される通り)dCas9ドメインを含む。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は、(例えば、本明細書に記載される通り)dCas9ドメインを含む融合蛋白質である。いくつかの態様において、Cas9蛋白質はCas9ニッカーゼである。
他の態様において、(例えば、Cas9蛋白質以外の)エフェクター蛋白質とカチオン性ポリマーとを含む組成物が提供され、これが細胞の内部に(例えば細胞の核に)エフェクター蛋白質を送達することができる。エフェクター蛋白質は、天然に負に荷電しているか、正味の負の総電荷を有するように改変されるか、または本明細書に記載される負の超荷電蛋白質と結びつけられるかのいずれかである。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質は本明細書に記載されるいずれかのエフェクター蛋白質である。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質はリコンビナーゼ(例えば本明細書に記載されるいずれかのリコンビナーゼ)である。いくつかの態様において、リコンビナーゼはCreリコンビナーゼである。いくつかの態様において、Creリコンビナーゼは(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号32のアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、Creリコンビナーゼは、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号32のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、または少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、Creリコンビナーゼは超荷電蛋白質(例えば、+36GFPまたは-30GFP)に融合される。いくつかの態様において、超荷電蛋白質に融合されたCreリコンビナーゼは(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号33もしくは(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号34のアミノ酸配列を含むか、または(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号33もしくは配列番号34のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、もしくは少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、エフェクター蛋白質はTALE蛋白質である(例えば、本明細書に記載される通り、例において提供されるものを包含する)。いくつかの態様において、TALE蛋白質はVP64転写活性化因子ドメイン(例えば、配列番号35)の1つまたは2つ以上を包含する。いくつかの態様において、VP64転写活性化因子ドメインを有するTALE蛋白質は、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号36~39からなる群から選択されるアミノ酸配列をさらに含む。いくつかの態様において、VP64転写活性化因子ドメインを有するTALE蛋白質は、(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号36~39からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、または少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、TALEエフェクター蛋白質は、(-30)GFPドメイン(例えば、配列番号21または配列番号40)、TALEドメインのN末端領域(例えば、配列番号41)、可変リピートドメイン(例えば、Maeder et al.,「Robust, synergistic regulation of human gene expression using TALE activators.」Nat. Methods. 2013; 10, 243-245において提供されている18.5merリピートドメイン)、C末端TALEドメイン(例えば、配列番号42)、VP64活性化ドメイン(例えば、配列番号35)、ならびに任意で1つまたは2つ以上のリンカー(例えばGGS(9)。配列番号252)をいずれかのドメインと任意で配列タグ(例えば6×His。配列番号253)との間に含む。
いくつかの態様において、本明細書に記載されるCas9蛋白質または他のエフェクター蛋白質とカチオン性ポリマーとを含む組成物は、(例えば、インビトロまたはインビボの)細胞の集団に投与されたときに低い毒性を示す。いくつかの態様において、集団中の細胞の少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%が、Cas9蛋白質または他のエフェクター蛋白質とカチオン性ポリマーとを含む本発明組成物の投与後に生存可能である。細胞の集団に投与されたときに組成物の毒性を評価するための方法は当分野において周知であり、例に記載されるものを包含する。
Cas9エフェクター蛋白質
いくつかの態様において、RNAによってプログラミング可能な蛋白質(またはその断片もしくはバリアント)を含むエフェクター蛋白質が、本明細書において提供されるシステムまたは方法によってターゲット細胞に送達される。いくつかの態様において、RNAによってガイドされるまたはRNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼが、本明細書において提供されるシステムまたは方法によってターゲット細胞に送達される。いくつかの態様において、RNAによってプログラミング可能な蛋白質はCas9ヌクレアーゼ、Cas9バリアント、またはCas9蛋白質の融合体であり、これは本明細書において提供されるシステムまたは方法によってターゲット細胞に送達される。
いくつかの態様において、RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼは、(CRISPR関連システム)Cas9エンドヌクレアーゼ、例えばStreptococcus pyogenesからのCas9(Csn1)である(例えば、「Complete genome sequence of an M1 strain of Streptococcus pyogenes.」Ferretti J. J., McShan W.M., Ajdic D.J., Savic D.J., Savic G., Lyon K., Primeaux C., Sezate S., Suvorov A.N., Kenton S., Lai H.S., Lin S.P., Qian Y., Jia H.G., Najar F.Z., Ren Q., Zhu H., Song L. expand/collapse author list McLaughlin R.E., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98:4658-4663(2001)、「CRISPR RNA maturation by trans-encoded small RNA and host factor RNase III.」Deltcheva E., Chylinski K., Sharma C.M., Gonzales K., Chao Y., Pirzada Z.A., Eckert M.R., Vogel J., Charpentier E., Nature 471:602-607(2011)、および「A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity.」Jinek M., Chylinski K., Fonfara I., Hauer M., Doudna J.A., Charpentier E. Science 337:816-821(2012)参照。そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼ(例えばCas9)はRNA:DNAハイブリダイゼーションを用いてターゲットDNA切断部位を決定するので、それらの蛋白質は、ガイドRNAによって規定されるいずれかの配列を原理的には切断する能力がある。部位特異的な切断のために(例えばゲノムを改変するために)Cas9などのRNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼを用いる方法は、当分野において公知である(例えば、Cong, L. et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science 339, 819-823 (2013)、Mali, P. et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science 339, 823-826 (2013)、Hwang, W.Y. et al. Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system. Nature biotechnology 31, 227-229 (2013)、Jinek, M. et al. RNA-programmed genome editing in human cells. eLife 2, e00471 (2013)、Dicarlo, J.E. et al. Genome engineering in Saccharomyces cerevisiae using CRISPR-Cas systems. Nucleic acids research (2013)、Jiang, W. et al. RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems. Nature biotechnology 31, 233-239 (2013)参照。そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。
Cas9ヌクレアーゼは場合によってはcasn1ヌクレアーゼまたはCRISPR(クラスター化した規則的に点在する短いパリンドロームリピート)関連ヌクレアーゼともまた言われる。CRISPRは、可動性遺伝子エレメント(ウイルス、転移因子、および接合性プラスミド)からの保護を提供する適応免疫システムである。CRISPRクラスターは、スペーサー(先行可動性因子に相補的な配列)を含有し、侵入核酸をターゲット化する。CRISPRクラスターは転写およびプロセシングされてCRISPR-RNA(crRNA)になる。II型CRISPRシステムにおいて、pre-crRNAの正しいプロセシングはtracrRNA(トランスにコードされるスモールRNA)、内在性リボヌクレアーゼ3(rnc)、およびCas9蛋白質を要求する。tracrRNAは、pre-crRNAのリボヌクレアーゼ3によって補助されるプロセシングのためのガイドとして働く。その後に、Cas9/crRNA/tracrRNAは、スペーサーに相補的なリニアなまたは環状のdsDNAターゲットをエンド的に(endonucleolytically)切断する。crRNAに相補的でないターゲット鎖が最初にエンド的に切断され、それから3’から5’にエキソ的に(exonucleolytically)トリミングされる。天然には、DNA結合および切断は、典型的には蛋白質および両方のRNAを要求する。しかしながら、シングルガイドRNA(「sgRNA」または単純に「gNRA」)は、crRNAおよびtracrRNA両方の側面を単一のRNA種に組み込むように操作され得る。例えば、Jinek M., Chylinski K., Fonfara I., Hauer M., Doudna J.A., Charpentier E. Science 337:816-821(2012)参照。その全内容は参照によってここに組み込まれる。Cas9はCRISPRリピート配列中の短いモチーフ(PAMまたはプロトスペーサー隣接モチーフ)を認識して、自己対非自己を見分けることを助ける。Cas9ヌクレアーゼ配列および構造は当業者に周知である(例えば、「Complete genome sequence of an M1 strain of Streptococcus pyogenes.」Ferretti J.J., McShan W.M., Ajdic D.J., Savic D.J., Savic G., Lyon K., Primeaux C., Sezate S., Suvorov A.N., Kenton S., Lai H.S., Lin S.P., Qian Y., Jia H.G., Najar F.Z., Ren Q., Zhu H., Song L. expand/collapse author list McLaughlin R.E., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98:4658-4663(2001)、「CRISPR RNA maturation by trans-encoded small RNA and host factor RNase III.」Deltcheva E., Chylinski K., Sharma C.M., Gonzales K., Chao Y., Pirzada Z.A., Eckert M.R., Vogel J., Charpentier E., Nature 471:602-607(2011)、および「A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity.」Jinek M., Chylinski K., Fonfara I., Hauer M., Doudna J. A., Charpentier E. Science 337:816-821(2012)参照。そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。
Cas9オーソログは様々な種において記載されており、S.pyogenesおよびS.thermophilusを包含するが、これに限定されない。追加の好適なCas9ヌクレアーゼおよび配列は、本開示に基づいて当業者には明らかであろう。かかるCas9ヌクレアーゼおよび配列は、Chylinski, Rhun, and Charpentier,「The tracrRNA and Cas9 families of type II CRISPR-Cas immunity systems」(2013) RNA Biology 10:5, 726-737に開示されている生物および遺伝子座からのCas9配列を包含し、その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。いくつかの態様において、Cas9蛋白質またはその断片を含む蛋白質は「Cas9バリアント」と言われる。Cas9バリアントはCas9またはその断片に対する相同性を共有する。例えば、Cas9バリアントは、野生型Cas9と少なくとも約70%同一、少なくとも約80%同一、少なくとも約90%同一、少なくとも約95%同一、少なくとも約98%同一、少なくとも約99%同一、少なくとも約99.5%同一、または少なくとも約99.9%である。いくつかの態様において、Cas9バリアントはCas9の断片(例えば、gRNA結合ドメインまたはDNA切断ドメイン、N末端ドメインまたはC末端ドメインなど)を含み、その結果、断片は野生型Cas9の対応する断片と少なくとも約70%同一、少なくとも約80%同一、少なくとも約90%同一、少なくとも約95%同一、少なくとも約98%同一、少なくとも約99%同一、少なくとも約99.5%同一、または少なくとも約99.9%である。いくつかの態様において、野生型Cas9はStreptococcus pyogenesからのCas9に対応する(NCBI参照配列:NC_017053.1、配列番号43(ヌクレオチド)、配列番号44(アミノ酸))。いくつかの態様において、Cas9蛋白質は不活性な(例えば不活性型の)DNA切断ドメインを有する。ヌクレアーゼ不活性型Cas9蛋白質は、交換可能に、(ヌクレアーゼ「不能(dead)」Cas9として)「dCas9」蛋白質と言われ得る。いくつかの態様において、dCas9は、部分的または全体的に、下の配列番号45として示されているアミノ酸に対応するか、またはそれを含む。いくつかの態様において、dCas9のバリアント(例えば、配列番号45のバリアント)が提供される。例えば、いくつかの態様において、D10AおよびH840A以外の変異を有するバリアントが提供され、これがヌクレアーゼ不活性型Cas9(dCas9)をもたらす。かかる変異は、例として、D10およびH840における他のアミノ酸置換、またはCas9のヌクレアーゼドメイン内の他の置換(例えば、HNHヌクレアーゼサブドメインおよび/またはRuvC1サブドメイン内の置換)を包含する。いくつかの態様において、dCas9のバリアントまたはホモログ(例えば、配列番号45のバリアント)が提供され、これらは配列番号45と少なくとも約70%同一、少なくとも約80%同一、少なくとも約90%同一、少なくとも約95%同一、少なくとも約98%同一、少なくとも約99%同一、少なくとも約99.5%同一、または少なくとも約99.9%である。いくつかの態様において、dCas9のバリアント(例えば、配列番号45のバリアント)が提供され、約5アミノ酸、約10アミノ酸、約15アミノ酸、約20アミノ酸、約25アミノ酸、約30アミノ酸、約40アミノ酸、約50アミノ酸、約75アミノ酸、約100または101アミノ酸以上だけ配列番号45よりも短いかまたは長いアミノ酸配列を有する。いくつかの態様において、Cas9「ニッカーゼ」が提供され、これはCas9中の単一のヌクレアーゼドメインを不活性化する変異を含む。かかるニッカーゼは、二本鎖切断と対比してターゲット核酸中の一本鎖切断を誘導する。
Cas9
ATGGATAAGAAATACTCAATAGGCTTAGATATCGGCACAAATAGCGTCGGATGGGCGGTGATCACTGATGATTATAAGGTTCCGTCTAAAAAGTTCAAGGTTCTGGGAAATACAGACCGCCACAGTATCAAAAAAAATCTTATAGGGGCTCTTTTATTTGGCAGTGGAGAGACAGCGGAAGCGACTCGTCTCAAACGGACAGCTCGTAGAAGGTATACACGTCGGAAGAATCGTATTTGTTATCTACAGGAGATTTTTTCAAATGAGATGGCGAAAGTAGATGATAGTTTCTTTCATCGACTTGAAGAGTCTTTTTTGGTGGAAGAAGACAAGAAGCATGAACGTCATCCTATTTTTGGAAATATAGTAGATGAAGTTGCTTATCATGAGAAATATCCAACTATCTATCATCTGCGAAAAAAATTGGCAGATTCTACTGATAAAGCGGATTTGCGCTTAATCTATTTGGCCTTAGCGCATATGATTAAGTTTCGTGGTCATTTTTTGATTGAGGGAGATTTAAATCCTGATAATAGTGATGTGGACAAACTATTTATCCAGTTGGTACAAATCTACAATCAATTATTTGAAGAAAACCCTATTAACGCAAGTAGAGTAGATGCTAAAGCGATTCTTTCTGCACGATTGAGTAAATCAAGACGATTAGAAAATCTCATTGCTCAGCTCCCCGGTGAGAAGAGAAATGGCTTGTTTGGGAATCTCATTGCTTTGTCATTGGGATTGACCCCTAATTTTAAATCAAATTTTGATTTGGCAGAAGATGCTAAATTACAGCTTTCAAAAGATACTTACGATGATGATTTAGATAATTTATTGGCGCAAATTGGAGATCAATATGCTGATTTGTTTTTGGCAGCTAAGAATTTATCAGATGCTATTTTACTTTCAGATATCCTAAGAGTAAATAGTGAAATAACTAAGGCTCCCCTATCAGCTTCAATGATTAAGCGCTACGATGAACATCATCAAGACTTGACTCTTTTAAAAGCTTTAGTTCGACAACAACTTCCAGAAAAGTATAAAGAAATCTTTTTTGATCAATCAAAAAACGGATATGCAGGTTATATTGATGGGGGAGCTAGCCAAGAAGAATTTTATAAATTTATCAAACCAATTTTAGAAAAAATGGATGGTACTGAGGAATTATTGGTGAAACTAAATCGTGAAGATTTGCTGCGCAAGCAACGGACCTTTGACAACGGCTCTATTCCCCATCAAATTCACTTGGGTGAGCTGCATGCTATTTTGAGAAGACAAGAAGACTTTTATCCATTTTTAAAAGACAATCGTGAGAAGATTGAAAAAATCTTGACTTTTCGAATTCCTTATTATGTTGGTCCATTGGCGCGTGGCAATAGTCGTTTTGCATGGATGACTCGGAAGTCTGAAGAAACAATTACCCCATGGAATTTTGAAGAAGTTGTCGATAAAGGTGCTTCAGCTCAATCATTTATTGAACGCATGACAAACTTTGATAAAAATCTTCCAAATGAAAAAGTACTACCAAAACATAGTTTGCTTTATGAGTATTTTACGGTTTATAACGAATTGACAAAGGTCAAATATGTTACTGAGGGAATGCGAAAACCAGCATTTCTTTCAGGTGAACAGAAGAAAGCCATTGTTGATTTACTCTTCAAAACAAATCGAAAAGTAACCGTTAAGCAATTAAAAGAAGATTATTTCAAAAAAATAGAATGTTTTGATAGTGTTGAAATTTCAGGAGTTGAAGATAGATTTAATGCTTCATTAGGCGCCTACCATGATTTGCTAAAAATTATTAAAGATAAAGATTTTTTGGATAATGAAGAAAATGAAGATATCTTAGAGGATATTGTTTTAACATTGACCTTATTTGAAGATAGGGGGATGATTGAGGAAAGACTTAAAACATATGCTCACCTCTTTGATGATAAGGTGATGAAACAGCTTAAACGTCGCCGTTATACTGGTTGGGGACGTTTGTCTCGAAAATTGATTAATGGTATTAGGGATAAGCAATCTGGCAAAACAATATTAGATTTTTTGAAATCAGATGGTTTTGCCAATCGCAATTTTATGCAGCTGATCCATGATGATAGTTTGACATTTAAAGAAGATATTCAAAAAGCACAGGTGTCTGGACAAGGCCATAGTTTACATGAACAGATTGCTAACTTAGCTGGCAGTCCTGCTATTAAAAAAGGTATTTTACAGACTGTAAAAATTGTTGATGAACTGGTCAAAGTAATGGGGCATAAGCCAGAAAATATCGTTATTGAAATGGCACGTGAAAATCAGACAACTCAAAAGGGCCAGAAAAATTCGCGAGAGCGTATGAAACGAATCGAAGAAGGTATCAAAGAATTAGGAAGTCAGATTCTTAAAGAGCATCCTGTTGAAAATACTCAATTGCAAAATGAAAAGCTCTATCTCTATTATCTACAAAATGGAAGAGACATGTATGTGGACCAAGAATTAGATATTAATCGTTTAAGTGATTATGATGTCGATCACATTGTTCCACAAAGTTTCATTAAAGACGATTCAATAGACAATAAGGTACTAACGCGTTCTGATAAAAATCGTGGTAAATCGGATAACGTTCCAAGTGAAGAAGTAGTCAAAAAGATGAAAAACTATTGGAGACAACTTCTAAACGCCAAGTTAATCACTCAACGTAAGTTTGATAATTTAACGAAAGCTGAACGTGGAGGTTTGAGTGAACTTGATAAAGCTGGTTTTATCAAACGCCAATTGGTTGAAACTCGCCAAATCACTAAGCATGTGGCACAAATTTTGGATAGTCGCATGAATACTAAATACGATGAAAATGATAAACTTATTCGAGAGGTTAAAGTGATTACCTTAAAATCTAAATTAGTTTCTGACTTCCGAAAAGATTTCCAATTCTATAAAGTACGTGAGATTAACAATTACCATCATGCCCATGATGCGTATCTAAATGCCGTCGTTGGAACTGCTTTGATTAAGAAATATCCAAAACTTGAATCGGAGTTTGTCTATGGTGATTATAAAGTTTATGATGTTCGTAAAATGATTGCTAAGTCTGAGCAAGAAATAGGCAAAGCAACCGCAAAATATTTCTTTTACTCTAATATCATGAACTTCTTCAAAACAGAAATTACACTTGCAAATGGAGAGATTCGCAAACGCCCTCTAATCGAAACTAATGGGGAAACTGGAGAAATTGTCTGGGATAAAGGGCGAGATTTTGCCACAGTGCGCAAAGTATTGTCCATGCCCCAAGTCAATATTGTCAAGAAAACAGAAGTACAGACAGGCGGATTCTCCAAGGAGTCAATTTTACCAAAAAGAAATTCGGACAAGCTTATTGCTCGTAAAAAAGACTGGGATCCAAAAAAATATGGTGGTTTTGATAGTCCAACGGTAGCTTATTCAGTCCTAGTGGTTGCTAAGGTGGAAAAAGGGAAATCGAAGAAGTTAAAATCCGTTAAAGAGTTACTAGGGATCACAATTATGGAAAGAAGTTCCTTTGAAAAAAATCCGATTGACTTTTTAGAAGCTAAAGGATATAAGGAAGTTAAAAAAGACTTAATCATTAAACTACCTAAATATAGTCTTTTTGAGTTAGAAAACGGTCGTAAACGGATGCTGGCTAGTGCCGGAGAATTACAAAAAGGAAATGAGCTGGCTCTGCCAAGCAAATATGTGAATTTTTTATATTTAGCTAGTCATTATGAAAAGTTGAAGGGTAGTCCAGAAGATAACGAACAAAAACAATTGTTTGTGGAGCAGCATAAGCATTATTTAGATGAGATTATTGAGCAAATCAGTGAATTTTCTAAGCGTGTTATTTTAGCAGATGCCAATTTAGATAAAGTTCTTAGTGCATATAACAAACATAGAGACAAACCAATACGTGAACAAGCAGAAAATATTATTCATTTATTTACGTTGACGAATCTTGGAGCTCCCGCTGCTTTTAAATATTTTGATACAACAATTGATCGTAAACGATATACGTCTACAAAAGAAGTTTTAGATGCCACTCTTATCCATCAATCCATCACTGGTCTTTATGAAACACGCATTGATTTGAGTCAGCTAGGAGGTGACTGA(配列番号43)
Cas9ニッカーゼ(D10A):
MDKKYSIGLAIGTNSVGWAVITDEYKVPSKKFKVLGNTDRHSIKKNLIGALLFDSGETAEATRLKRTARRRYTRRKNRICYLQEIFSNEMAKVDDSFFHRLEESFLVEEDKKHERHPIFGNIVDEVAYHEKYPTIYHLRKKLVDSTDKADLRLIYLALAHMIKFRGHFLIEGDLNPDNSDVDKLFIQLVQTYNQLFEENPINASGVDAKAILSARLSKSRRLENLIAQLPGEKKNGLFGNLIALSLGLTPNFKSNFDLAEDAKLQLSKDTYDDDLDNLLAQIGDQYADLFLAAKNLSDAILLSDILRVNTEITKAPLSASMIKRYDEHHQDLTLLKALVRQQLPEKYKEIFFDQSKNGYAGYIDGGASQEEFYKFIKPILEKMDGTEELLVKLNREDLLRKQRTFDNGSIPHQIHLGELHAILRRQEDFYPFLKDNREKIEKILTFRIPYYVGPLARGNSRFAWMTRKSEETITPWNFEEVVDKGASAQSFIERMTNFDKNLPNEKVLPKHSLLYEYFTVYNELTKVKYVTEGMRKPAFLSGEQKKAIVDLLFKTNRKVTVKQLKEDYFKKIECFDSVEISGVEDRFNASLGTYHDLLKIIKDKDFLDNEENEDILEDIVLTLTLFEDREMIEERLKTYAHLFDDKVMKQLKRRRYTGWGRLSRKLINGIRDKQSGKTILDFLKSDGFANRNFMQLIHDDSLTFKEDIQKAQVSGQGDSLHEHIANLAGSPAIKKGILQTVKVVDELVKVMGRHKPENIVIEMARENQTTQKGQKNSRERMKRIEEGIKELGSQILKEHPVENTQLQNEKLYLYYLQNGRDMYVDQELDINRLSDYDVDHIVPQSFLKDDSIDNKVLTRSDKNRGKSDNVPSEEVVKKMKNYWRQLLNAKLITQRKFDNLTKAERGGLSELDKAGFIKRQLVETRQITKHVAQILDSRMNTKYDENDKLIREVKVITLKSKLVSDFRKDFQFYKVREINNYHHAHDAYLNAVVGTALIKKYPKLESEFVYGDYKVYDVRKMIAKSEQEIGKATAKYFFYSNIMNFFKTEITLANGEIRKRPLIETNGETGEIVWDKGRDFATVRKVLSMPQVNIVKKTEVQTGGFSKESILPKRNSDKLIARKKDWDPKKYGGFDSPTVAYSVLVVAKVEKGKSKKLKSVKELLGITIMERSSFEKNPIDFLEAKGYKEVKKDLIIKLPKYSLFELENGRKRMLASAGELQKGNELALPSKYVNFLYLASHYEKLKGSPEDNEQKQLFVEQHKHYLDEIIEQISEFSKRVILADANLDKVLSAYNKHRDKPIREQAENIIHLFTLTNLGAPAAFKYFDTTIDRKRYTSTKEVLDATLIHQSITGLYETRIDLSQLGGD(配列番号46)
いくつかの態様において、Cas9蛋白質を含む融合蛋白質が、本明細書に記載される組成物および方法のいずれかへの使用のために提供される。いくつかの態様において、融合蛋白質はdCas9蛋白質(例えば、本明細書に記載される通り)を含む。いくつかの態様において、融合蛋白質は、リンカー(例えば、本明細書に記載される通り)をdCas9と1つまたは2つ以上のドメイン(例えば、酵素ドメイン)との間に含む。いくつかの態様において、融合蛋白質は、dCas9と転写活性化因子ドメイン、転写抑制因子ドメイン、リコンビナーゼドメイン、遺伝子編集ドメイン(例えばデアミナーゼドメイン(doman))、またはエピジェネティック修飾因子ドメインとを含む。
いくつかの態様において、本明細書において提供される例示的な融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[酵素ドメイン]-[dCas9]-[COOH]、または
[NH]-[dCas9]-[酵素ドメイン]-[COOH]
を含み、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端であり、酵素ドメインは、ヌクレアーゼドメイン(例えば、FokI)、リコンビナーゼ触媒ドメイン(例えば、Hin、Gin、またはTn3リコンビナーゼドメイン)、核酸編集ドメイン(例えば、デアミナーゼドメイン)、転写活性化因子ドメイン(例えば、VP64、p65)、転写抑制因子ドメイン(例えば、KRAB、SID)、またはエピジェネティック修飾因子(例えば、LSD1ヒストン脱メチル化酵素、TET1ヒドロキシラーゼ)を含む。
追加の特徴、例えばある種のドメイン間の1つまたは2つ以上のリンカー配列が存在し得る。存在し得る他の例示的な特徴は、局在配列、例えば核局在配列(NLS。例えばMAPKKKRKVGIHRGVP(配列番号47))、細胞質局在配列、排出配列、例えば核外排出配列、または他の局在配列、さらには融合蛋白質の可溶化、精製、または検出に有用である配列タグである。好適な局在シグナル配列および蛋白質タグの配列が本明細書において提供されており、当分野において公知であり、ビオチンカルボキシラーゼキャリア蛋白質(BCCP)タグ、mycタグ、カルモジュリンタグ、FLAGタグ(例えば3×FLAGタグ。MDYKDHDGDYKDHDIDYKDDDDK(配列番号48))、ヘマグルチニン(HA)タグ、ポリヒスチジンタグ(ヒスチジンタグまたはHisタグともまた言われる)、マルトース結合蛋白質(MBP)タグ、nusタグ、グルタチオン-S-トランスフェラーゼ(GST)タグ、緑色蛍光蛋白質(GFP)タグ、チオレドキシンタグ、Sタグ、Softag(例えば、Softag1、Softag3)、strepタグ、ビオチンリガーゼタグ、FlAsHタグ、V5タグ、およびSBPタグを包含するが、これに限定されない。追加の好適な配列は当業者には明らかであろう。
いくつかの態様において、酵素ドメインはヌクレアーゼまたはその触媒ドメインを含む。例えば、いくつかの態様において、ヌクレアーゼドメインを有する例示的なリガンド依存性dCas9融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[NLS]-[dCas9]-[ヌクレアーゼ]-[COOH]、
[NH]-[NLS]-[ヌクレアーゼ]-[dCas9]-[COOH]、
[NH]-[dCas9]-[ヌクレアーゼ]-[COOH]、または
[NH]-[ヌクレアーゼ]-[dCas9]-[COOH]
を含み、NLSは核局在シグナルであり、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端である。いくつかの態様において、リンカーがdCas9とヌクレアーゼドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、リンカーがNLSとヌクレアーゼおよび/またはdCas9ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、NLSはヌクレアーゼおよび/またはdCas9ドメインのC末端に位置する。いくつかの態様において、NLSはヌクレアーゼとdCas9ドメインとの間に位置する。配列タグなどの追加の特徴もまた存在し得る。いくつかの側面において、ヌクレアーゼドメインは、ターゲット核酸(例えばDNA)を切断するために二量体化(例えば、ヌクレアーゼの2つの単量体の一緒になること)を要求するヌクレアーゼである。いくつかの態様において、ヌクレアーゼドメインはFokIのDNA切断ドメインの単量体である。FokIのDNA切断ドメインは公知であり、いくつかの側面において、FokIのアミノ酸388~583に対応する(NCBI登録番号J04623)。いくつかの態様において、FokIのDNA切断ドメインはFokIのアミノ酸300~583、320~583、340~583、または360~583に対応する。Wah et al.,「Structure of FokI has implications for DNA cleavage」Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998; 1 ;95(18): 10564-9、Li et al.,「TAL nucleases (TALNs): hybrid proteins composed of TAL effectors and FokI DNA-cleavage domain」Nucleic Acids Res. 2011; 39(l):359-72、Kim et al.,「Hybrid restriction enzymes: zinc finger fusions to Fok I cleavage domain」Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1996; 93: 1156-1160をもまた参照。それぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。いくつかの態様において、FokIのDNA切断ドメインは、配列番号49として示されているアミノ酸配列に対応するか、またはそれを部分的にもしくは全体的に含む。いくつかの態様において、FokIのDNA切断ドメインは、本明細書に記載されるFokIのバリアント(例えば、配列番号49のバリアント)である。dCas9-ヌクレアーゼ融合蛋白質を用いる他の例示的な組成物および方法は、2014年6月30日出願の「Cas9-FokI Fusion Proteins and Uses Thereof」と題するU.S.特許出願U.S.S.N14/320,498に見いだされ得、その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。
FokIヌクレアーゼドメイン:
GSQLVKSELEEKKSELRHKLKYVPHEYIELIEIARNSTQDRILEMKVMEFFMKVYGYRGKHLGGSRKPDGAIYTVGSPIDYGVIVDTKAYSGGYNLPIGQADEMQRYVEENQTRNKHINPNEWWKVYPSSVTEFKFLFVSGHFKGNYKAQLTRLNHITNCNGAVLSVEELLIGGEMIKAGTLTLEEVRRKFNNGEINF(配列番号49)
fCas9(例えば、dCas9-NLS-GGS3リンカー-FokI):
ATGGATAAAAAGTATTCTATTGGTTTAGCTATCGGCACTAATTCCGTTGGATGGGCTGTCATAACCGATGAATACAAAGTACCTTCAAAGAAATTTAAGGTGTTGGGGAACACAGACCGTCATTCGATTAAAAAGAATCTTATCGGTGCCCTCCTATTCGATAGTGGCGAAACGGCAGAGGCGACTCGCCTGAAACGAACCGCTCGGAGAAGGTATACACGTCGCAAGAACCGAATATGTTACTTACAAGAAATTTTTAGCAATGAGATGGCCAAAGTTGACGATTCTTTCTTTCACCGTTTGGAAGAGTCCTTCCTTGTCGAAGAGGACAAGAAACATGAACGGCACCCCATCTTTGGAAACATAGTAGATGAGGTGGCATATCATGAAAAGTACCCAACGATTTATCACCTCAGAAAAAAGCTAGTTGACTCAACTGATAAAGCGGACCTGAGGTTAATCTACTTGGCTCTTGCCCATATGATAAAGTTCCGTGGGCACTTTCTCATTGAGGGTGATCTAAATCCGGACAACTCGGATGTCGACAAACTGTTCATCCAGTTAGTACAAACCTATAATCAGTTGTTTGAAGAGAACCCTATAAATGCAAGTGGCGTGGATGCGAAGGCTATTCTTAGCGCCCGCCTCTCTAAATCCCGACGGCTAGAAAACCTGATCGCACAATTACCCGGAGAGAAGAAAAATGGGTTGTTCGGTAACCTTATAGCGCTCTCACTAGGCCTGACACCAAATTTTAAGTCGAACTTCGACTTAGCTGAAGATGCCAAATTGCAGCTTAGTAAGGACACGTACGATGACGATCTCGACAATCTACTGGCACAAATTGGAGATCAGTATGCGGACTTATTTTTGGCTGCCAAAAACCTTAGCGATGCAATCCTCCTATCTGACATACTGAGAGTTAATACTGAGATTACCAAGGCGCCGTTATCCGCTTCAATGATCAAAAGGTACGATGAACATCACCAAGACTTGACACTTCTCAAGGCCCTAGTCCGTCAGCAACTGCCTGAGAAATATAAGGAAATATTCTTTGATCAGTCGAAAAACGGGTACGCAGGTTATATTGACGGCGGAGCGAGTCAAGAGGAATTCTACAAGTTTATCAAACCCATATTAGAGAAGATGGATGGGACGGAAGAGTTGCTTGTAAAACTCAATCGCGAAGATCTACTGCGAAAGCAGCGGACTTTCGACAACGGTAGCATTCCACATCAAATCCACTTAGGCGAATTGCATGCTATACTTAGAAGGCAGGAGGATTTTTATCCGTTCCTCAAAGACAATCGTGAAAAGATTGAGAAAATCCTAACCTTTCGCATACCTTACTATGTGGGACCCCTGGCCCGAGGGAACTCTCGGTTCGCATGGATGACAAGAAAGTCCGAAGAAACGATTACTCCATGGAATTTTGAGGAAGTTGTCGATAAAGGTGCGTCAGCTCAATCGTTCATCGAGAGGATGACCAACTTTGACAAGAATTTACCGAACGAAAAAGTATTGCCTAAGCACAGTTTACTTTACGAGTATTTCACAGTGTACAATGAACTCACGAAAGTTAAGTATGTCACTGAGGGCATGCGTAAACCCGCCTTTCTAAGCGGAGAACAGAAGAAAGCAATAGTAGATCTGTTATTCAAGACCAACCGCAAAGTGACAGTTAAGCAATTGAAAGAGGACTACTTTAAGAAAATTGAATGCTTCGATTCTGTCGAGATCTCCGGGGTAGAAGATCGATTTAATGCGTCACTTGGTACGTATCATGACCTCCTAAAGATAATTAAAGATAAGGACTTCCTGGATAACGAAGAGAATGAAGATATCTTAGAAGATATAGTGTTGACTCTTACCCTCTTTGAAGATCGGGAAATGATTGAGGAAAGACTAAAAACATACGCTCACCTGTTCGACGATAAGGTTATGAAACAGTTAAAGAGGCGTCGCTATACGGGCTGGGGACGATTGTCGCGGAAACTTATCAACGGGATAAGAGACAAGCAAAGTGGTAAAACTATTCTCGATTTTCTAAAGAGCGACGGCTTCGCCAATAGGAACTTTATGCAGCTGATCCATGATGACTCTTTAACCTTCAAAGAGGATATACAAAAGGCACAGGTTTCCGGACAAGGGGACTCATTGCACGAACATATTGCGAATCTTGCTGGTTCGCCAGCCATCAAAAAGGGCATACTCCAGACAGTCAAAGTAGTGGATGAGCTAGTTAAGGTCATGGGACGTCACAAACCGGAAAACATTGTAATCGAGATGGCACGCGAAAATCAAACGACTCAGAAGGGGCAAAAAAACAGTCGAGAGCGGATGAAGAGAATAGAAGAGGGTATTAAAGAACTGGGCAGCCAGATCTTAAAGGAGCATCCTGTGGAAAATACCCAATTGCAGAACGAGAAACTTTACCTCTATTACCTACAAAATGGAAGGGACATGTATGTTGATCAGGAACTGGACATAAACCGTTTATCTGATTACGACGTCGATGCCATTGTACCCCAATCCTTTTTGAAGGACGATTCAATCGACAATAAAGTGCTTACACGCTCGGATAAGAACCGAGGGAAAAGTGACAATGTTCCAAGCGAGGAAGTCGTAAAGAAAATGAAGAACTATTGGCGGCAGCTCCTAAATGCGAAACTGATAACGCAAAGAAAGTTCGATAACTTAACTAAAGCTGAGAGGGGTGGCTTGTCTGAACTTGACAAGGCCGGATTTATTAAACGTCAGCTCGTGGAAACCCGCCAAATCACAAAGCATGTTGCACAGATACTAGATTCCCGAATGAATACGAAATACGACGAGAACGATAAGCTGATTCGGGAAGTCAAAGTAATCACTTTAAAGTCAAAATTGGTGTCGGACTTCAGAAAGGATTTTCAATTCTATAAAGTTAGGGAGATAAATAACTACCACCATGCGCACGACGCTTATCTTAATGCCGTCGTAGGGACCGCACTCATTAAGAAATACCCGAAGCTAGAAAGTGAGTTTGTGTATGGTGATTACAAAGTTTATGACGTCCGTAAGATGATCGCGAAAAGCGAACAGGAGATAGGCAAGGCTACAGCCAAATACTTCTTTTATTCTAACATTATGAATTTCTTTAAGACGGAAATCACTCTGGCAAACGGAGAGATACGCAAACGACCTTTAATTGAAACCAATGGGGAGACAGGTGAAATCGTATGGGATAAGGGCCGGGACTTCGCGACGGTGAGAAAAGTTTTGTCCATGCCCCAAGTCAACATAGTAAAGAAAACTGAGGTGCAGACCGGAGGGTTTTCAAAGGAATCGATTCTTCCAAAAAGGAATAGTGATAAGCTCATCGCTCGTAAAAAGGACTGGGACCCGAAAAAGTACGGTGGCTTCGATAGCCCTACAGTTGCCTATTCTGTCCTAGTAGTGGCAAAAGTTGAGAAGGGAAAATCCAAGAAACTGAAGTCAGTCAAAGAATTATTGGGGATAACGATTATGGAGCGCTCGTCTTTTGAAAAGAACCCCATCGACTTCCTTGAGGCGAAAGGTTACAAGGAAGTAAAAAAGGATCTCATAATTAAACTACCAAAGTATAGTCTGTTTGAGTTAGAAAATGGCCGAAAACGGATGTTGGCTAGCGCCGGAGAGCTTCAAAAGGGGAACGAACTCGCACTACCGTCTAAATACGTGAATTTCCTGTATTTAGCGTCCCATTACGAGAAGTTGAAAGGTTCACCTGAAGATAACGAACAGAAGCAACTTTTTGTTGAGCAGCACAAACATTATCTCGACGAAATCATAGAGCAAATTTCGGAATTCAGTAAGAGAGTCATCCTAGCTGATGCCAATCTGGACAAAGTATTAAGCGCATACAACAAGCACAGGGATAAACCCATACGTGAGCAGGCGGAAAATATTATCCATTTGTTTACTCTTACCAACCTCGGCGCTCCAGCCGCATTCAAGTATTTTGACACAACGATAGATCGCAAACGATACACTTCTACCAAGGAGGTGCTAGACGCGACACTGATTCACCAATCCATCACGGGATTATATGAAACTCGGATAGATTTGTCACAGCTTGGGGGTGACGGATCCCCCAAGAAGAAGAGGAAAGTCTCGAGCGACTACAAAGACCATGACGGTGATTATAAAGATCATGACATCGATTACAAGGATGACGATGACAAGGCTGCAGGATCAGGTGGAAGTGGCGGCAGCGGAGGTTCTGGATCCCAACTAGTCAAAAGTGAACTGGAGGAGAAGAAATCTGAACTTCGTCATAAATTGAAATATGTGCCTCATGAATATATTGAATTAATTGAAATTGCCAGAAATTCCACTCAGGATAGAATTCTTGAAATGAAGGTAATGGAATTTTTTATGAAAGTTTATGGATATAGAGGTAAACATTTGGGTGGATCAAGGAAACCGGACGGAGCAATTTATACTGTCGGATCTCCTATTGATTACGGTGTGATCGTGGATACTAAAGCTTATAGCGGAGGTTATAATCTGCCAATTGGCCAAGCAGATGAAATGCAACGATATGTCGAAGAAAATCAAACACGAAACAAACATATCAACCCTAATGAATGGTGGAAAGTCTATCCATCTTCTGTAACGGAATTTAAGTTTTTATTTGTGAGTGGTCACTTTAAAGGAAACTACAAAGCTCAGCTTACACGATTAAATCATATCACTAATTGTAATGGAGCTGTTCTTAGTGTAGAAGAGCTTTTAATTGGTGGAGAAATGATTAAAGCCGGCACATTAACCTTAGAGGAA
GTCAGACGGAAATTTAATAACGGCGAGATAAACTTT(配列番号50)
fCas9(例えば、NLS-dCas9-GGS3リンカー-FokI):
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ATGGGATCCCAACTAGTCAAAAGTGAACTGGAGGAGAAGAAATCTGAACTTCGTCATAAATTGAAATATGTGCCTCATGAATATATTGAATTAATTGAAATTGCCAGAAATTCCACTCAGGATAGAATTCTTGAAATGAAGGTAATGGAATTTTTTATGAAAGTTTATGGATATAGAGGTAAACATTTGGGTGGATCAAGGAAACCGGACGGAGCAATTTATACTGTCGGATCTCCTATTGATTACGGTGTGATCGTGGATACTAAAGCTTATAGCGGAGGTTATAATCTGCCAATTGGCCAAGCAGATGAAATGCAACGATATGTCGAAGAAAATCAAACACGAAACAAACATATCAACCCTAATGAATGGTGGAAAGTCTATCCATCTTCTGTAACGGAATTTAAGTTTTTATTTGTGAGTGGTCACTTTAAAGGAAACTACAAAGCTCAGCTTACACGATTAAATCATATCACTAATTGTAATGGAGCTGTTCTTAGTGTAGAAGAGCTTTTAATTGGTGGAGAAATGATTAAAGCCGGCACATTAACCTTAGAGGAAGTCAGACGGAAATTTAATAACGGCGAGATAAACTTTGGCGGTAGTGGGGGATCTGGGGGAAGTATGGATAAAAAGTATTCTATTGGTTTAGCTATCGGCACTAATTCCGTTGGATGGGCTGTCATAACCGATGAATACAAAGTACCTTCAAAGAAATTTAAGGTGTTGGGGAACACAGACCGTCATTCGATTAAAAAGAATCTTATCGGTGCCCTCCTATTCGATAGTGGCGAAACGGCAGAGGCGACTCGCCTGAAACGAACCGCTCGGAGAAGGTATACACGTCGCAAGAACCGAATATGTTACTTACAAGAAATTTTTAGCAATGAGATGGCCAAAGTTGACGATTCTTTCTTTCACCGTTTGGAAGAGTCCTTCCTTGTCGAAGAGGACAAGAAACATGAACGGCACCCCATCTTTGGAAACATAGTAGATGAGGTGGCATATCATGAAAAGTACCCAACGATTTATCACCTCAGAAAAAAGCTAGTTGACTCAACTGATAAAGCGGACCTGAGGTTAATCTACTTGGCTCTTGCCCATATGATAAAGTTCCGTGGGCACTTTCTCATTGAGGGTGATCTAAATCCGGACAACTCGGATGTCGACAAACTGTTCATCCAGTTAGTACAAACCTATAATCAGTTGTTTGAAGAGAACCCTATAAATGCAAGTGGCGTGGATGCGAAGGCTATTCTTAGCGCCCGCCTCTCTAAATCCCGACGGCTAGAAAACCTGATCGCACAATTACCCGGAGAGAAGAAAAATGGGTTGTTCGGTAACCTTATAGCGCTCTCACTAGGCCTGACACCAAATTTTAAGTCGAACTTCGACTTAGCTGAAGATGCCAAATTGCAGCTTAGTAAGGACACGTACGATGACGATCTCGACAATCTACTGGCACAAATTGGAGATCAGTATGCGGACTTATTTTTGGCTGCCAAAAACCTTAGCGATGCAATCCTCCTATCTGACATACTGAGAGTTAATACTGAGATTACCAAGGCGCCGTTATCCGCTTCAATGATCAAAAGGTACGATGAACATCACCAAGACTTGACACTTCTCAAGGCCCTAGTCCGTCAGCAACTGCCTGAGAAATATAAGGAAATATTCTTTGATCAGTCGAAAAACGGGTACGCAGGTTATATTGACGGCGGAGCGAGTCAAGAGGAATTCTACAAGTTTATCAAACCCATATTAGAGAAGATGGATGGGACGGAAGAGTTGCTTGTAAAACTCAATCGCGAAGATCTACTGCGAAAGCAGCGGACTTTCGACAACGGTAGCATTCCACATCAAATCCACTTAGGCGAATTGCATGCTATACTTAGAAGGCAGGAGGATTTTTATCCGTTCCTCAAAGACAATCGTGAAAAGATTGAGAAAATCCTAACCTTTCGCATACCTTACTATGTGGGACCCCTGGCCCGAGGGAACTCTCGGTTCGCATGGATGACAAGAAAGTCCGAAGAAACGATTACTCCATGGAATTTTGAGGAAGTTGTCGATAAAGGTGCGTCAGCTCAATCGTTCATCGAGAGGATGACCAACTTTGACAAGAATTTACCGAACGAAAAAGTATTGCCTAAGCACAGTTTACTTTACGAGTATTTCACAGTGTACAATGAACTCACGAAAGTTAAGTATGTCACTGAGGGCATGCGTAAACCCGCCTTTCTAAGCGGAGAACAGAAGAAAGCAATAGTAGATCTGTTATTCAAGACCAACCGCAAAGTGACAGTTAAGCAATTGAAAGAGGACTACTTTAAGAAAATTGAATGCTTCGATTCTGTCGAGATCTCCGGGGTAGAAGATCGATTTAATGCGTCACTTGGTACGTATCATGACCTCCTAAAGATAATTAAAGATAAGGACTTCCTGGATAACGAAGAGAATGAAGATATCTTAGAAGATATAGTGTTGACTCTTACCCTCTTTGAAGATCGGGAAATGATTGAGGAAAGACTAAAAACATACGCTCACCTGTTCGACGATAAGGTTATGAAACAGTTAAAGAGGCGTCGCTATACGGGCTGGGGACGATTGTCGCGGAAACTTATCAACGGGATAAGAGACAAGCAAAGTGGTAAAACTATTCTCGATTTTCTAAAGAGCGACGGCTTCGCCAATAGGAACTTTATGCAGCTGATCCATGATGACTCTTTAACCTTCAAAGAGGATATACAAAAGGCACAGGTTTCCGGACAAGGGGACTCATTGCACGAACATATTGCGAATCTTGCTGGTTCGCCAGCCATCAAAAAGGGCATACTCCAGACAGTCAAAGTAGTGGATGAGCTAGTTAAGGTCATGGGACGTCACAAACCGGAAAACATTGTAATCGAGATGGCACGCGAAAATCAAACGACTCAGAAGGGGCAAAAAAACAGTCGAGAGCGGATGAAGAGAATAGAAGAGGGTATTAAAGAACTGGGCAGCCAGATCTTAAAGGAGCATCCTGTGGAAAATACCCAATTGCAGAACGAGAAACTTTACCTCTATTACCTACAAAATGGAAGGGACATGTATGTTGATCAGGAACTGGACATAAACCGTTTATCTGATTACGACGTCGATGCCATTGTACCCCAATCCTTTTTGAAGGACGATTCAATCGACAATAAAGTGCTTACACGCTCGGATAAGAACCGAGGGAAAAGTGACAATGTTCCAAGCGAGGAAGTCGTAAAGAAAATGAAGAACTATTGGCGGCAGCTCCTAAATGCGAAACTGATAACGCAAAGAAAGTTCGATAACTTAACTAAAGCTGAGAGGGGTGGCTTGTCTGAACTTGACAAGGCCGGATTTATTAAACGTCAGCTCGTGGAAACCCGCCAAATCACAAAGCATGTTGCACAGATACTAGATTCCCGAATGAATACGAAATACGACGAGAACGATAAGCTGATTCGGGAAGTCAAAGTAATCACTTTAAAGTCAAAATTGGTGTCGGACTTCAGAAAGGATTTTCAATTCTATAAAGTTAGGGAGATAAATAACTACCACCATGCGCACGACGCTTATCTTAATGCCGTCGTAGGGACCGCACTCATTAAGAAATACCCGAAGCTAGAAAGTGAGTTTGTGTATGGTGATTACAAAGTTTATGACGTCCGTAAGATGATCGCGAAAAGCGAACAGGAGATAGGCAAGGCTACAGCCAAATACTTCTTTTATTCTAACATTATGAATTTCTTTAAGACGGAAATCACTCTGGCAAACGGAGAGATACGCAAACGACCTTTAATTGAAACCAATGGGGAGACAGGTGAAATCGTATGGGATAAGGGCCGGGACTTCGCGACGGTGAGAAAAGTTTTGTCCATGCCCCAAGTCAACATAGTAAAGAAAACTGAGGTGCAGACCGGAGGGTTTTCAAAGGAATCGATTCTTCCAAAAAGGAATAGTGATAAGCTCATCGCTCGTAAAAAGGACTGGGACCCGAAAAAGTACGGTGGCTTCGATAGCCCTACAGTTGCCTATTCTGTCCTAGTAGTGGCAAAAGTTGAGAAGGGAAAATCCAAGAAACTGAAGTCAGTCAAAGAATTATTGGGGATAACGATTATGGAGCGCTCGTCTTTTGAAAAGAACCCCATCGACTTCCTTGAGGCGAAAGGTTACAAGGAAGTAAAAAAGGATCTCATAATTAAACTACCAAAGTATAGTCTGTTTGAGTTAGAAAATGGCCGAAAACGGATGTTGGCTAGCGCCGGAGAGCTTCAAAAGGGGAACGAACTCGCACTACCGTCTAAATACGTGAATTTCCTGTATTTAGCGTCCCATTACGAGAAGTTGAAAGGTTCACCTGAAGATAACGAACAGAAGCAACTTTTTGTTGAGCAGCACAAACATTATCTCGACGAAATCATAGAGCAAATTTCGGAATTCAGTAAGAGAGTCATCCTAGCTGATGCCAATCTGGACAAAGTATTAAGCGCATACAACAAGCACAGGGATAAACCCATACGTGAGCAGGCGGAAAATATTATCCATTTGTTTACTCTTACCAACCTCGGCGCTCCAGCCGCATTCAAGTATTTTGACACAACGATAGATCGCAAACGATACACTTCTACCAAGGAGGTGCTAGACGCGACACTGATTCACCAATCCATCACGGGATTATATGAAACTCGGATAGATTTGTCACAGCTTGGGGGTGACGGATCCCCCAAGAAGAAGAGGAAAGTCTCGAGCGACTACAAAGACCATGACGGTGATTATAAAGATCATGACATCGATTACAAGGATGACGATGACAAGGCTGCAGGA(配列番号52)
fCas9(例えば、NLS-FokI-GGS3リンカー-dCas9):
ATGGACTACAAAGACCATGACGGTGATTATAAAGATCATGACATCGATTACAAGGATGACGATGACAAGATGGCCCCCAAGAAGAAGAGGAAGGTGGGCATTCACCGCGGGGTACCTGGAGGTTCTATGGGATCCCAACTAGTCAAAAGTGAACTGGAGGAGAAGAAATCTGAACTTCGTCATAAATTGAAATATGTGCCTCATGAATATATTGAATTAATTGAAATTGCCAGAAATTCCACTCAGGATAGAATTCTTGAAATGAAGGTAATGGAATTTTTTATGAAAGTTTATGGATATAGAGGTAAACATTTGGGTGGATCAAGGAAACCGGACGGAGCAATTTATACTGTCGGATCTCCTATTGATTACGGTGTGATCGTGGATACTAAAGCTTATAGCGGAGGTTATAATCTGCCAATTGGCCAAGCAGATGAAATGCAACGATATGTCGAAGAAAATCAAACACGAAACAAACATATCAACCCTAATGAATGGTGGAAAGTCTATCCATCTTCTGTAACGGAATTTAAGTTTTTATTTGTGAGTGGTCACTTTAAAGGAAACTACAAAGCTCAGCTTACACGATTAAATCATATCACTAATTGTAATGGAGCTGTTCTTAGTGTAGAAGAGCTTTTAATTGGTGGAGAAATGATTAAAGCCGGCACATTAACCTTAGAGGAAGTCAGACGGAAATTTAATAACGGCGAGATAAACTTTGGCGGTAGTGGGGGATCTGGGGGAAGTATGGATAAAAAGTATTCTATTGGTTTAGCTATCGGCACTAATTCCGTTGGATGGGCTGTCATAACCGATGAATACAAAGTACCTTCAAAGAAATTTAAGGTGTTGGGGAACACAGACCGTCATTCGATTAAAAAGAATCTTATCGGTGCCCTCCTATTCGATAGTGGCGAAACGGCAGAGGCGACTCGCCTGAAACGAACCGCTCGGAGAAGGTATACACGTCGCAAGAACCGAATATGTTACTTACAAGAAATTTTTAGCAATGAGATGGCCAAAGTTGACGATTCTTTCTTTCACCGTTTGGAAGAGTCCTTCCTTGTCGAAGAGGACAAGAAACATGAACGGCACCCCATCTTTGGAAACATAGTAGATGAGGTGGCATATCATGAAAAGTACCCAACGATTTATCACCTCAGAAAAAAGCTAGTTGACTCAACTGATAAAGCGGACCTGAGGTTAATCTACTTGGCTCTTGCCCATATGATAAAGTTCCGTGGGCACTTTCTCATTGAGGGTGATCTAAATCCGGACAACTCGGATGTCGACAAACTGTTCATCCAGTTAGTACAAACCTATAATCAGTTGTTTGAAGAGAACCCTATAAATGCAAGTGGCGTGGATGCGAAGGCTATTCTTAGCGCCCGCCTCTCTAAATCCCGACGGCTAGAAAACCTGATCGCACAATTACCCGGAGAGAAGAAAAATGGGTTGTTCGGTAACCTTATAGCGCTCTCACTAGGCCTGACACCAAATTTTAAGTCGAACTTCGACTTAGCTGAAGATGCCAAATTGCAGCTTAGTAAGGACACGTACGATGACGATCTCGACAATCTACTGGCACAAATTGGAGATCAGTATGCGGACTTATTTTTGGCTGCCAAAAACCTTAGCGATGCAATCCTCCTATCTGACATACTGAGAGTTAATACTGAGATTACCAAGGCGCCGTTATCCGCTTCAATGATCAAAAGGTACGATGAACATCACCAAGACTTGACACTTCTCAAGGCCCTAGTCCGTCAGCAACTGCCTGAGAAATATAAGGAAATATTCTTTGATCAGTCGAAAAACGGGTACGCAGGTTATATTGACGGCGGAGCGAGTCAAGAGGAATTCTACAAGTTTATCAAACCCATATTAGAGAAGATGGATGGGACGGAAGAGTTGCTTGTAAAACTCAATCGCGAAGATCTACTGCGAAAGCAGCGGACTTTCGACAACGGTAGCATTCCACATCAAATCCACTTAGGCGAATTGCATGCTATACTTAGAAGGCAGGAGGATTTTTATCCGTTCCTCAAAGACAATCGTGAAAAGATTGAGAAAATCCTAACCTTTCGCATACCTTACTATGTGGGACCCCTGGCCCGAGGGAACTCTCGGTTCGCATGGATGACAAGAAAGTCCGAAGAAACGATTACTCCATGGAATTTTGAGGAAGTTGTCGATAAAGGTGCGTCAGCTCAATCGTTCATCGAGAGGATGACCAACTTTGACAAGAATTTACCGAACGAAAAAGTATTGCCTAAGCACAGTTTACTTTACGAGTATTTCACAGTGTACAATGAACTCACGAAAGTTAAGTATGTCACTGAGGGCATGCGTAAACCCGCCTTTCTAAGCGGAGAACAGAAGAAAGCAATAGTAGATCTGTTATTCAAGACCAACCGCAAAGTGACAGTTAAGCAATTGAAAGAGGACTACTTTAAGAAAATTGAATGCTTCGATTCTGTCGAGATCTCCGGGGTAGAAGATCGATTTAATGCGTCACTTGGTACGTATCATGACCTCCTAAAGATAATTAAAGATAAGGACTTCCTGGATAACGAAGAGAATGAAGATATCTTAGAAGATATAGTGTTGACTCTTACCCTCTTTGAAGATCGGGAAATGATTGAGGAAAGACTAAAAACATACGCTCACCTGTTCGACGATAAGGTTATGAAACAGTTAAAGAGGCGTCGCTATACGGGCTGGGGACGATTGTCGCGGAAACTTATCAACGGGATAAGAGACAAGCAAAGTGGTAAAACTATTCTCGATTTTCTAAAGAGCGACGGCTTCGCCAATAGGAACTTTATGCAGCTGATCCATGATGACTCTTTAACCTTCAAAGAGGATATACAAAAGGCACAGGTTTCCGGACAAGGGGACTCATTGCACGAACATATTGCGAATCTTGCTGGTTCGCCAGCCATCAAAAAGGGCATACTCCAGACAGTCAAAGTAGTGGATGAGCTAGTTAAGGTCATGGGACGTCACAAACCGGAAAACATTGTAATCGAGATGGCACGCGAAAATCAAACGACTCAGAAGGGGCAAAAAAACAGTCGAGAGCGGATGAAGAGAATAGAAGAGGGTATTAAAGAACTGGGCAGCCAGATCTTAAAGGAGCATCCTGTGGAAAATACCCAATTGCAGAACGAGAAACTTTACCTCTATTACCTACAAAATGGAAGGGACATGTATGTTGATCAGGAACTGGACATAAACCGTTTATCTGATTACGACGTCGATGCCATTGTACCCCAATCCTTTTTGAAGGACGATTCAATCGACAATAAAGTGCTTACACGCTCGGATAAGAACCGAGGGAAAAGTGACAATGTTCCAAGCGAGGAAGTCGTAAAGAAAATGAAGAACTATTGGCGGCAGCTCCTAAATGCGAAACTGATAACGCAAAGAAAGTTCGATAACTTAACTAAAGCTGAGAGGGGTGGCTTGTCTGAACTTGACAAGGCCGGATTTATTAAACGTCAGCTCGTGGAAACCCGCCAAATCACAAAGCATGTTGCACAGATACTAGATTCCCGAATGAATACGAAATACGACGAGAACGATAAGCTGATTCGGGAAGTCAAAGTAATCACTTTAAAGTCAAAATTGGTGTCGGACTTCAGAAAGGATTTTCAATTCTATAAAGTTAGGGAGATAAATAACTACCACCATGCGCACGACGCTTATCTTAATGCCGTCGTAGGGACCGCACTCATTAAGAAATACCCGAAGCTAGAAAGTGAGTTTGTGTATGGTGATTACAAAGTTTATGACGTCCGTAAGATGATCGCGAAAAGCGAACAGGAGATAGGCAAGGCTACAGCCAAATACTTCTTTTATTCTAACATTATGAATTTCTTTAAGACGGAAATCACTCTGGCAAACGGAGAGATACGCAAACGACCTTTAATTGAAACCAATGGGGAGACAGGTGAAATCGTATGGGATAAGGGCCGGGACTTCGCGACGGTGAGAAAAGTTTTGTCCATGCCCCAAGTCAACATAGTAAAGAAAACTGAGGTGCAGACCGGAGGGTTTTCAAAGGAATCGATTCTTCCAAAAAGGAATAGTGATAAGCTCATCGCTCGTAAAAAGGACTGGGACCCGAAAAAGTACGGTGGCTTCGATAGCCCTACAGTTGCCTATTCTGTCCTAGTAGTGGCAAAAGTTGAGAAGGGAAAATCCAAGAAACTGAAGTCAGTCAAAGAATTATTGGGGATAACGATTATGGAGCGCTCGTCTTTTGAAAAGAACCCCATCGACTTCCTTGAGGCGAAAGGTTACAAGGAAGTAAAAAAGGATCTCATAATTAAACTACCAAAGTATAGTCTGTTTGAGTTAGAAAATGGCCGAAAACGGATGTTGGCTAGCGCCGGAGAGCTTCAAAAGGGGAACGAACTCGCACTACCGTCTAAATACGTGAATTTCCTGTATTTAGCGTCCCATTACGAGAAGTTGAAAGGTTCACCTGAAGATAACGAACAGAAGCAACTTTTTGTTGAGCAGCACAAACATTATCTCGACGAAATCATAGAGCAAATTTCGGAATTCAGTAAGAGAGTCATCCTAGCTGATGCCAATCTGGACAAAGTATTAAGCGCATACAACAAGCACAGGGATAAACCCATACGTGAGCAGGCGGAAAATATTATCCATTTGTTTACTCTTACCAACCTCGGCGCTCCAGCCGCATTCAAGTATTTTGACACAACGATAGATCGCAAACGATACACTTCTACCAAGGAGGTGCTAGACGCGACACTGATTCACCAA
TCCATCACGGGATTATATGAAACTCGGATAGATTTGTCACAGCTTGGGGGTGAC(配列番号53)
fCas9:
ATGGACTACAAAGACCATGACGGTGATTATAAAGATCATGACATCGATTACAAGGATGACGATGACAAGATGGCCCCCAAGAAGAAGAGGAAGGTGGGCATTCACCGCGGGGTACCTGGAGGTTCTGGATCCCAACTAGTCAAAAGTGAACTGGAGGAGAAGAAATCTGAACTTCGTCATAAATTGAAATATGTGCCTCATGAATATATTGAATTAATTGAAATTGCCAGAAATTCCACTCAGGATAGAATTCTTGAAATGAAGGTAATGGAATTTTTTATGAAAGTTTATGGATATAGAGGTAAACATTTGGGTGGATCAAGGAAACCGGACGGAGCAATTTATACTGTCGGATCTCCTATTGATTACGGTGTGATCGTGGATACTAAAGCTTATAGCGGAGGTTATAATCTGCCAATTGGCCAAGCAGATGAAATGCAACGATATGTCGAAGAAAATCAAACACGAAACAAACATATCAACCCTAATGAATGGTGGAAAGTCTATCCATCTTCTGTAACGGAATTTAAGTTTTTATTTGTGAGTGGTCACTTTAAAGGAAACTACAAAGCTCAGCTTACACGATTAAATCATATCACTAATTGTAATGGAGCTGTTCTTAGTGTAGAAGAGCTTTTAATTGGTGGAGAAATGATTAAAGCCGGCACATTAACCTTAGAGGAAGTCAGACGGAAATTTAATAACGGCGAGATAAACTTTAGCGGCAGCGAGACTCCCGGGACCTCAGAGTCCGCCACACCCGAAAGTGATAAAAAGTATTCTATTGGTTTAGCTATCGGCACTAATTCCGTTGGATGGGCTGTCATAACCGATGAATACAAAGTACCTTCAAAGAAATTTAAGGTGTTGGGGAACACAGACCGTCATTCGATTAAAAAGAATCTTATCGGTGCCCTCCTATTCGATAGTGGCGAAACGGCAGAGGCGACTCGCCTGAAACGAACCGCTCGGAGAAGGTATACACGTCGCAAGAACCGAATATGTTACTTACAAGAAATTTTTAGCAATGAGATGGCCAAAGTTGACGATTCTTTCTTTCACCGTTTGGAAGAGTCCTTCCTTGTCGAAGAGGACAAGAAACATGAACGGCACCCCATCTTTGGAAACATAGTAGATGAGGTGGCATATCATGAAAAGTACCCAACGATTTATCACCTCAGAAAAAAGCTAGTTGACTCAACTGATAAAGCGGACCTGAGGTTAATCTACTTGGCTCTTGCCCATATGATAAAGTTCCGTGGGCACTTTCTCATTGAGGGTGATCTAAATCCGGACAACTCGGATGTCGACAAACTGTTCATCCAGTTAGTACAAACCTATAATCAGTTGTTTGAAGAGAACCCTATAAATGCAAGTGGCGTGGATGCGAAGGCTATTCTTAGCGCCCGCCTCTCTAAATCCCGACGGCTAGAAAACCTGATCGCACAATTACCCGGAGAGAAGAAAAATGGGTTGTTCGGTAACCTTATAGCGCTCTCACTAGGCCTGACACCAAATTTTAAGTCGAACTTCGACTTAGCTGAAGATGCCAAATTGCAGCTTAGTAAGGACACGTACGATGACGATCTCGACAATCTACTGGCACAAATTGGAGATCAGTATGCGGACTTATTTTTGGCTGCCAAAAACCTTAGCGATGCAATCCTCCTATCTGACATACTGAGAGTTAATACTGAGATTACCAAGGCGCCGTTATCCGCTTCAATGATCAAAAGGTACGATGAACATCACCAAGACTTGACACTTCTCAAGGCCCTAGTCCGTCAGCAACTGCCTGAGAAATATAAGGAAATATTCTTTGATCAGTCGAAAAACGGGTACGCAGGTTATATTGACGGCGGAGCGAGTCAAGAGGAATTCTACAAGTTTATCAAACCCATATTAGAGAAGATGGATGGGACGGAAGAGTTGCTTGTAAAACTCAATCGCGAAGATCTACTGCGAAAGCAGCGGACTTTCGACAACGGTAGCATTCCACATCAAATCCACTTAGGCGAATTGCATGCTATACTTAGAAGGCAGGAGGATTTTTATCCGTTCCTCAAAGACAATCGTGAAAAGATTGAGAAAATCCTAACCTTTCGCATACCTTACTATGTGGGACCCCTGGCCCGAGGGAACTCTCGGTTCGCATGGATGACAAGAAAGTCCGAAGAAACGATTACTCCATGGAATTTTGAGGAAGTTGTCGATAAAGGTGCGTCAGCTCAATCGTTCATCGAGAGGATGACCAACTTTGACAAGAATTTACCGAACGAAAAAGTATTGCCTAAGCACAGTTTACTTTACGAGTATTTCACAGTGTACAATGAACTCACGAAAGTTAAGTATGTCACTGAGGGCATGCGTAAACCCGCCTTTCTAAGCGGAGAACAGAAGAAAGCAATAGTAGATCTGTTATTCAAGACCAACCGCAAAGTGACAGTTAAGCAATTGAAAGAGGACTACTTTAAGAAAATTGAATGCTTCGATTCTGTCGAGATCTCCGGGGTAGAAGATCGATTTAATGCGTCACTTGGTACGTATCATGACCTCCTAAAGATAATTAAAGATAAGGACTTCCTGGATAACGAAGAGAATGAAGATATCTTAGAAGATATAGTGTTGACTCTTACCCTCTTTGAAGATCGGGAAATGATTGAGGAAAGACTAAAAACATACGCTCACCTGTTCGACGATAAGGTTATGAAACAGTTAAAGAGGCGTCGCTATACGGGCTGGGGACGATTGTCGCGGAAACTTATCAACGGGATAAGAGACAAGCAAAGTGGTAAAACTATTCTCGATTTTCTAAAGAGCGACGGCTTCGCCAATAGGAACTTTATGCAGCTGATCCATGATGACTCTTTAACCTTCAAAGAGGATATACAAAAGGCACAGGTTTCCGGACAAGGGGACTCATTGCACGAACATATTGCGAATCTTGCTGGTTCGCCAGCCATCAAAAAGGGCATACTCCAGACAGTCAAAGTAGTGGATGAGCTAGTTAAGGTCATGGGACGTCACAAACCGGAAAACATTGTAATCGAGATGGCACGCGAAAATCAAACGACTCAGAAGGGGCAAAAAAACAGTCGAGAGCGGATGAAGAGAATAGAAGAGGGTATTAAAGAACTGGGCAGCCAGATCTTAAAGGAGCATCCTGTGGAAAATACCCAATTGCAGAACGAGAAACTTTACCTCTATTACCTACAAAATGGAAGGGACATGTATGTTGATCAGGAACTGGACATAAACCGTTTATCTGATTACGACGTCGATGCCATTGTACCCCAATCCTTTTTGAAGGACGATTCAATCGACAATAAAGTGCTTACACGCTCGGATAAGAACCGAGGGAAAAGTGACAATGTTCCAAGCGAGGAAGTCGTAAAGAAAATGAAGAACTATTGGCGGCAGCTCCTAAATGCGAAACTGATAACGCAAAGAAAGTTCGATAACTTAACTAAAGCTGAGAGGGGTGGCTTGTCTGAACTTGACAAGGCCGGATTTATTAAACGTCAGCTCGTGGAAACCCGCCAAATCACAAAGCATGTTGCACAGATACTAGATTCCCGAATGAATACGAAATACGACGAGAACGATAAGCTGATTCGGGAAGTCAAAGTAATCACTTTAAAGTCAAAATTGGTGTCGGACTTCAGAAAGGATTTTCAATTCTATAAAGTTAGGGAGATAAATAACTACCACCATGCGCACGACGCTTATCTTAATGCCGTCGTAGGGACCGCACTCATTAAGAAATACCCGAAGCTAGAAAGTGAGTTTGTGTATGGTGATTACAAAGTTTATGACGTCCGTAAGATGATCGCGAAAAGCGAACAGGAGATAGGCAAGGCTACAGCCAAATACTTCTTTTATTCTAACATTATGAATTTCTTTAAGACGGAAATCACTCTGGCAAACGGAGAGATACGCAAACGACCTTTAATTGAAACCAATGGGGAGACAGGTGAAATCGTATGGGATAAGGGCCGGGACTTCGCGACGGTGAGAAAAGTTTTGTCCATGCCCCAAGTCAACATAGTAAAGAAAACTGAGGTGCAGACCGGAGGGTTTTCAAAGGAATCGATTCTTCCAAAAAGGAATAGTGATAAGCTCATCGCTCGTAAAAAGGACTGGGACCCGAAAAAGTACGGTGGCTTCGATAGCCCTACAGTTGCCTATTCTGTCCTAGTAGTGGCAAAAGTTGAGAAGGGAAAATCCAAGAAACTGAAGTCAGTCAAAGAATTATTGGGGATAACGATTATGGAGCGCTCGTCTTTTGAAAAGAACCCCATCGACTTCCTTGAGGCGAAAGGTTACAAGGAAGTAAAAAAGGATCTCATAATTAAACTACCAAAGTATAGTCTGTTTGAGTTAGAAAATGGCCGAAAACGGATGTTGGCTAGCGCCGGAGAGCTTCAAAAGGGGAACGAACTCGCACTACCGTCTAAATACGTGAATTTCCTGTATTTAGCGTCCCATTACGAGAAGTTGAAAGGTTCACCTGAAGATAACGAACAGAAGCAACTTTTTGTTGAGCAGCACAAACATTATCTCGACGAAATCATAGAGCAAATTTCGGAATTCAGTAAGAGAGTCATCCTAGCTGATGCCAATCTGGACAAAGTATTAAGCGCATACAACAAGCACAGGGATAAACCCATACGTGAGCAGGCGGAAAATATTATCCATTTGTTTACTCTTACCAACCTCGGCGCTCCAGCCGCATTCAAGTATTTTGACACAACGATAGATCGCAAACGATACACTTCTACCAAGGAGGTGCTAGACGCGACACTGATTCACCAATCCATCACGGGATTATATGAAACTCGGATAGATTTGTCACAGCTTGGGGGTGAC(配列番号54)
いくつかの態様において、酵素ドメインはリコンビナーゼまたはその触媒ドメインを含む。例えば、いくつかの態様において、リコンビナーゼドメインを有する例示的なリガンド依存性dCas9融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[NLS]-[dCas9]-[リコンビナーゼ]-[COOH]、
[NH]-[NLS]-[リコンビナーゼ]-[dCas9]-[COOH]、
[NH]-[dCas9]-[リコンビナーゼ]-[COOH]、または
[NH]-[リコンビナーゼ]-[dCas9]-[COOH]、
を含み、NLSは核局在シグナルであり、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端である。いくつかの態様において、リンカーがdCas9とリコンビナーゼドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、リンカーがNLSとリコンビナーゼおよび/またはdCas9ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、NLSはリコンビナーゼドメインおよび/またはdCas9ドメインのC末端に位置する。いくつかの態様において、NLSはリコンビナーゼドメインとdCas9ドメインとの間に位置する。配列タグなどの追加の特徴もまた存在し得る。「リコンビナーゼの触媒ドメイン」によって、融合蛋白質がリコンビナーゼの(例えばそれに由来する)アミノ酸配列を含むドメインを包含し、その結果、ドメインは(単独でかまたは追加の因子(他のリコンビナーゼ触媒ドメインを包含し、それらは融合蛋白質の一部を形成し得るかまたは形成せずにあり得る)と一緒にのいずれかで)ターゲット核酸と接触したときに組み換えを誘導するために充分であるということが意味されている。いくつかの態様において、リコンビナーゼの触媒ドメインはリコンビナーゼのDNA結合ドメインを包含しない。いくつかの態様において、リコンビナーゼの触媒ドメインはリコンビナーゼの一部または全てを包含する。例えば、触媒ドメインはリコンビナーゼドメインおよびDNA結合ドメインもしくはその一部を包含し得るか、または、触媒ドメインはリコンビナーゼドメインとDNA結合活性を廃するように変異導入または末端欠損されたDNA結合ドメインとを包含し得る。リコンビナーゼおよびリコンビナーゼの触媒ドメインは当業者に公知であり、例えば本明細書に記載されるものを包含する。いくつかの態様において、触媒ドメインはいずれかのリコンビナーゼに由来する。いくつかの態様において、リコンビナーゼ触媒ドメインは、Tn3リゾルベース、Hinリコンビナーゼ、またはGinリコンビナーゼの触媒ドメインである。いくつかの態様において、触媒ドメインは、下で提供される配列番号55を部分的にまたは全体的に含むヌクレオチド配列によってコードされるTn3リゾルベース(例えば、StarkのTn3リコンビナーゼ)を含む。いくつかの態様において、Tn3触媒ドメインは配列番号55のバリアントによってコードされる。いくつかの態様において、Tn3触媒ドメインは、配列番号56に対応するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド(またはそのバリアント)によってコードされる。いくつかの態様において、触媒ドメインは、下で提供される配列番号57を部分的にまたは全体的に含むヌクレオチド配列によってコードされるHinリコンビナーゼを含む。いくつかの態様において、Hin触媒ドメインは配列番号57のバリアントによってコードされる。いくつかの態様において、Hin触媒ドメインは、配列番号58に対応するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド(またはそのバリアント)によってコードされる。いくつかの態様において、触媒ドメインは、下で提供される配列番号59を部分的にまたは全体的に含むヌクレオチド配列によってコードされるGinリコンビナーゼ(例えばGinベータリコンビナーゼ)を含む。いくつかの態様において、Gin触媒ドメインは配列番号59のバリアントによってコードされる。いくつかの態様において、Gin触媒ドメインは、配列番号60に対応するポリペプチドをコードするポリヌクレオチド(またはそのバリアント)によってコードされる。他の例示的な組成物とdCas9-リコンビナーゼ融合蛋白質を用いる方法とは、2014年6月30日出願の「Cas9 Variants and Uses Thereof」と題するU.S.特許出願U.S.S.N14/320,467に見いだされ得、その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。
StarkのTn3リコンビナーゼ(ヌクレオチド:配列番号55、アミノ酸:配列番号56):
ATGGCCCTGTTTGGCTACGCACGCGTGTCTACCAGTCAACAGTCACTCGATTTGCAAGTGAGGGCTCTTAAAGATGCCGGAGTGAAGGCAAACAGAATTTTTACTGATAAGGCCAGCGGAAGCAGCACAGACAGAGAGGGGCTGGATCTCCTGAGAATGAAGGTAAAGGAGGGTGATGTGATCTTGGTCAAAAAATTGGATCGACTGGGGAGAGACACAGCTGATATGCTTCAGCTTATTAAAGAGTTTGACGCTCAGGGTGTTGCCGTGAGGTTTATCGATGACGGCATCTCAACCGACTCCTACATTGGTCTTATGTTTGTGACAATTTTGTCCGCTGTGGCTCAGGCTGAGCGGAGAAGGATTCTCGAAAGGACGAATGAGGGACGGCAAGCAGCTAAGTTGAAAGGTATCAAATTTGGCAGACGAAGG(配列番号55)
MALFGYARVSTSQQSLDLQVRALKDAGVKANRIFTDKASGSSTDREGLDLLRMKVKEGDVILVKKLDRLGRDTADMLQLIKEFDAQGVAVRFIDDGISTDSYIGLMFVTILSAVAQAERRRILERTNEGRQAAKLKGIKFGRRR(配列番号56)
Hinリコンビナーゼ(ヌクレオチド:配列番号57、アミノ酸:配列番号58):
ATGGCAACCATTGGCTACATAAGGGTGTCTACCATCGACCAAAATATCGACCTGCAGCGCAACGCTCTGACATCCGCCAACTGCGATCGGATCTTCGAGGATAGGATCAGTGGCAAGATCGCCAACCGGCCCGGTCTGAAGCGGGCTCTGAAGTACGTGAATAAGGGCGATACTCTGGTTGTGTGGAAGTTGGATCGCTTGGGTAGATCAGTGAAGAATCTCGTAGCCCTGATAAGCGAGCTGCACGAGAGGGGTGCACATTTCCATTCTCTGACCGATTCCATCGATACGTCTAGCGCCATGGGCCGATTCTTCTTTTACGTCATGTCCGCCCTCGCTGAAATGGAGCGCGAACTTATTGTTGAACGGACTTTGGCTGGACTGGCAGCGGCTAGAGCACAGGGCCGACTTGGA(配列番号57)
MATIGYIRVSTIDQNIDLQRNALTSANCDRIFEDRISGKIANRPGLKRALKYVNKGDTLVVWKLDRLGRSVKNLVALISELHERGAHFHSLTDSIDTSSAMGRFFFYVMSALAEMERELIVERTLAGLAAARAQGRLG(配列番号58)
Ginベータリコンビナーゼ(ヌクレオチド:配列番号59、アミノ酸:配列番号60):
ATGCTCATTGGCTATGTAAGGGTCAGCACCAATGACCAAAACACAGACTTGCAACGCAATGCTTTGGTTTGCGCCGGATGTGAACAGATATTTGAAGATAAACTGAGCGGCACTCGGACAGACAGACCTGGGCTTAAGAGAGCACTGAAAAGACTGCAGAAGGGGGACACCCTGGTCGTCTGGAAACTGGATCGCCTCGGACGCAGCATGAAACATCTGATTAGCCTGGTTGGTGAGCTTAGGGAGAGAGGAATCAACTTCAGAAGCCTGACCGACTCCATCGACACCAGTAGCCCCATGGGACGATTCTTCTTCTATGTGATGGGAGCACTTGCTGAGATGGAAAGAGAGCTTATTATCGAAAGAACTATGGCTGGTATCGCTGCTGCCCGGAACAAAGGCAGACGGTTCGGCAGACCGCCGAAGAGCGGC(配列番号59)
MLIGYVRVSTNDQNTDLQRNALVCAGCEQIFEDKLSGTRTDRPGLKRALKRLQKGDTLVVWKLDRLGRSMKHLISLVGELRERGINFRSLTDSIDTSSPMGRFFFYVMGALAEMERELIIERTMAGIAAARNKGRRFGRPPKSG(配列番号60)
いくつかの態様において、酵素ドメインはデアミナーゼまたはその触媒ドメインを含む。例えば、いくつかの態様において、デアミナーゼ酵素またはドメインを有する例示的なdCas9融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[NLS]-[Cas9]-[デアミナーゼ]-[COOH]、
[NH]-[NLS]-[デアミナーゼ]-[Cas9]-[COOH]、
[NH]-[Cas9]-[デアミナーゼ]-[COOH]、または
[NH]-[デアミナーゼ]-[Cas9]-[COOH]
を含み、NLSは核局在シグナルであり、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端である。いくつかの態様において、リンカーがdCas9とデアミナーゼドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、リンカーがNLSとデアミナーゼおよび/またはdCas9ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、NLSはデアミナーゼおよび/またはdCas9ドメインのC末端に位置する。いくつかの態様において、NLSはデアミナーゼドメインとdCas9ドメインとの間に位置する。配列タグなどの追加の特徴もまた存在し得る。核酸編集酵素およびドメインの1つの例示的な好適な型は、例えば、シトシンデアミナーゼ酵素のアポリポ蛋白質BmRNA編集複合体(APOBEC)ファミリーのシトシンデアミナーゼであり、活性化誘導シチジンデアミナーゼ(AID)およびアポリポ蛋白質B編集複合体3(APOBEC3)酵素を包含する。本発明への使用に好適な核酸編集酵素およびそのドメインの別の例示的な好適な型は、アデノシンデアミナーゼを包含する。例えば、ADATファミリーアデノシンデアミナーゼがdCas9ドメインに融合され得る。本開示の側面に従ってdCas9ドメインに融合され得るいくつかの例示的な好適な核酸編集酵素およびドメイン(例えばデアミナーゼおよびデアミナーゼドメイン)が、下で提供される。いくつかの態様において、それぞれの配列の活性ドメイン、例えば局在シグナル(核局在シグナル、核外排出シグナル無し、細胞質局在シグナル)無しのドメインが用いられ得るということは理解されるであろう。dCas9-ヌクレアーゼ融合蛋白質を用いる他の例示的な組成物および方法は、2014年7月8日出願の「Fusions of Cas9 Domains and Nucleic Acid-Editing Domains」と題するU.S.特許出願U.S.S.N14/325,815に見いだされ得、その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる.
マウスAPOBEC-3:
MGPFCLGCSHRKCYSPIRNLISQETFKFHFKNLGYAKGRKDTFLCYEVTRKDCDSPVSLHHGVFKNKDNIHAEICFLYWFHDKVLKVLSPREEFKITWYMSWSPCFECAEQIVRFLATHHNLSLDIFSSRLYNVQDPETQQNLCRLVQEGAQVAAMDLYEFKKCWKKFVDNGGRRFRPWKRLLTNFRYQDSKLQEILRPCYIPVPSSSSSTLSNICLTKGLPETRFCVEGRRMDPLSEEEFYSQFYNQRVKHLCYYHRMKPYLCYQLEQFNGQAPLKGCLLSEKGKQHAEILFLDKIRSMELSQVTITCYLTWSPCPNCAWQLAAFKRDRPDLILHIYTSRLYFHWKRPFQKGLCSLWQSGILVDVMDLPQFTDCWTNFVNPKRPFWPWKGLEIISRRTQRRLRRIKESWGLQDLVNDFGNLQLGPPMS(配列番号65)(下線:核酸編集ドメイン)
ラットAPOBEC-3:
MGPFCLGCSHRKCYSPIRNLISQETFKFHFKNLRYAIDRKDTFLCYEVTRKDCDSPVSLHHGVFKNKDNIHAEICFLYWFHDKVLKVLSPREEFKITWYMSWSPCFECAEQVLRFLATHHNLSLDIFSSRLYNIRDPENQQNLCRLVQEGAQVAAMDLYEFKKCWKKFVDNGGRRFRPWKKLLTNFRYQDSKLQEILRPCYIPVPSSSSSTLSNICLTKGLPETRFCVERRRVHLLSEEEFYSQFYNQRVKHLCYYHGVKPYLCYQLEQFNGQAPLKGCLLSEKGKQHAEILFLDKIRSMELSQVIITCYLTWSPCPNCAWQLAAFKRDRPDLILHIYTSRLYFHWKRPFQKGLCSLWQSGILVDVMDLPQFTDCWTNFVNPKRPFWPWKGLEIISRRTQRRLHRIKESWGLQDLVNDFGNLQLGPPMS(配列番号66)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-3F:
MKPHFRNTVERMYRDTFSYNFYNRPILSRRNTVWLCYEVKTKGPSRPRLDAKIFRGQVYSQPEHHAEMCFLSWFCGNQLPAYKCFQITWFVSWTPCPDCVAKLAEFLAEHPNVTLTISAARLYYYWERDYRRALCRLSQAGARVKIMDDEEFAYCWENFVYSEGQPFMPWYKFDDNYAFLHRTLKEILRNPMEAMYPHIFYFHFKNLRKAYGRNESWLCFTMEVVKHHSPVSWKRGVFRNQVDPETHCHAERCFLSWFCDDILSPNTNYEVTWYTSWSPCPECAGEVAEFLARHSNVNLTIFTARLYYFWDTDYQEGLRSLSQEGASVEIMGYKDFKYCWENFVYNDDEPFKPWKGLKYNFLFLDSKLQEILE(配列番号71)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-3B:
MNPQIRNPMERMYRDTFYDNFENEPILYGRSYTWLCYEVKIKRGRSNLLWDTGVFRGQVYFKPQYHAEMCFLSWFCGNQLPAYKCFQITWFVSWTPCPDCVAKLAEFLSEHPNVTLTISAARLYYYWERDYRRALCRLSQAGARVTIMDYEEFAYCWENFVYNEGQQFMPWYKFDENYAFLHRTLKEILRYLMDPDTFTFNFNNDPLVLRRRQTYLCYEVERLDNGTWVLMDQHMGFLCNEAKNLLCGFYGRHAELRFLDLVPSLQLDPAQIYRVTWFISWSPCFSWGCAGEVRAFLQENTHVRLRIFAARIYDYDPLYKEALQMLRDAGAQVSIMTYDEFEYCWDTFVYRQGCPFQPWDGLEEHSQALSGRLRAILQNQGN(配列番号72)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-3C:
MNPQIRNPMKAMYPGTFYFQFKNLWEANDRNETWLCFTVEGIKRRSVVSWKTGVFRNQVDSETHCHAERCFLSWFCDDILSPNTKYQVTWYTSWSPCPDCAGEVAEFLARHSNVNLTIFTARLYYFQYPCYQEGLRSLSQEGVAVEIMDYEDFKYCWENFVYNDNEPFKPWKGLKTNFRLLKRRLRESLQ(配列番号73)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-3A:
MEASPASGPRHLMDPHIFTSNFNNGIGRHKTYLCYEVERLDNGTSVKMDQHRGFLHNQAKNLLCGFYGRHAELRFLDLVPSLQLDPAQIYRVTWFISWSPCFSWGCAGEVRAFLQENTHVRLRIFAARIYDYDPLYKEALQMLRDAGAQVSIMTYDEFKHCWDTFVDHQGCPFQPWDGLDEHSQALSGRLRAILQNQGN(配列番号74)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-3H:
MALLTAETFRLQFNNKRRLRRPYYPRKALLCYQLTPQNGSTPTRGYFENKKKCHAEICFINEIKSMGLDETQCYQVTCYLTWSPCSSCAWELVDFIKAHDHLNLGIFASRLYYHWCKPQQKGLRLLCGSQVPVEVMGFPKFADCWENFVDHEKPLSFNPYKMLEELDKNSRAIKRRLERIKIPGVRAQGRYMDILCDAEV(配列番号75)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-3D:
MNPQIRNPMERMYRDTFYDNFENEPILYGRSYTWLCYEVKIKRGRSNLLWDTGVFRGPVLPKRQSNHRQEVYFRFENHAEMCFLSWFCGNRLPANRRFQITWFVSWNPCLPCVVKVTKFLAEHPNVTLTISAARLYYYRDRDWRWVLLRLHKAGARVKIMDYEDFAYCWENFVCNEGQPFMPWYKFDDNYASLHRTLKEILRNPMEAMYPHIFYFHFKNLLKACGRNESWLCFTMEVTKHHSAVFRKRGVFRNQVDPETHCHAERCFLSWFCDDILSPNTNYEVTWYTSWSPCPECAGEVAEFLARHSNVNLTIFTARLCYFWDTDYQEGLCSLSQEGASVKIMGYKDFVSCWKNFVYSDDEPFKPWKGLQTNFRLLKRRLREILQ(配列番号76)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトAPOBEC-1:
MTSEKGPSTGDPTLRRRIEPWEFDVFYDPRELRKEACLLYEIKWGMSRKIWRSSGKNTTNHVEVNFIKKFTSERDFHPSMSCSITWFLSWSPCWECSQAIREFLSRHPGVTLVIYVARLFWHMDQQNRQGLRDLVNSGVTIQIMRASEYYHCWRNFVNYPPGDEAHWPQYPPLWMMLYALELHCIILSLPPCLKISRRWQNHLTFFRLHLQNCHYQTIPPHILLATGLIHPSVAWR(配列番号77)
マウスAPOBEC-1:
MSSETGPVAVDPTLRRRIEPHEFEVFFDPRELRKETCLLYEINWGGRHSVWRHTSQNTSNHVEVNFLEKFTTERYFRPNTRCSITWFLSWSPCGECSRAITEFLSRHPYVTLFIYIARLYHHTDQRNRQGLRDLISSGVTIQIMTEQEYCYCWRNFVNYPPSNEAYWPRYPHLWVKLYVLELYCIILGLPPCLKILRRKQPQLTFFTITLQTCHYQRIPPHLLWATGLK(配列番号78)
ラットAPOBEC-1:
MSSETGPVAVDPTLRRRIEPHEFEVFFDPRELRKETCLLYEINWGGRHSIWRHTSQNTNKHVEVNFIEKFTTERYFCPNTRCSITWFLSWSPCGECSRAITEFLSRYPHVTLFIYIARLYHHADPRNRQGLRDLISSGVTIQIMTEQESGYCWRNFVNYSPSNEAHWPRYPHLWVRLYVLELYCIILGLPPCLNILRRKQPQLTFFTIALQSCHYQRLPPHILWATGLK(配列番号79)
ヒトADAT-2:
MEAKAAPKPAASGACSVSAEETEKWMEEAMHMAKEALENTEVPVGCLMVYNNEVVGKGRNEVNQTKNATRHAEMVAIDQVLDWCRQSGKSPSEVFEHTVLYVTVEPCIMCAAALRLMKIPLVVYGCQNERFGGCGSVLNIASADLPNTGRPFQCIPGYRAEEAVEMLKTFYKQENPNAPKSKVRKKECQKS(配列番号80)
マウスADAT-2:
MEEKVESTTTPDGPCVVSVQETEKWMEEAMRMAKEALENIEVPVGCLMVYNNEVVGKGRNEVNQTKNATRHAEMVAIDQVLDWCHQHGQSPSTVFEHTVLYVTVEPCIMCAAALRLMKIPLVVYGCQNERFGGCGSVLNIASADLPNTGRPFQCIPGYRAEEAVELLKTFYKQENPNAPKSKVRKKDCQKS(配列番号81)
マウスADAT-1:
MWTADEIAQLCYAHYNVRLPKQGKPEPNREWTLLAAVVKIQASANQACDIPEKEVQVTKEVVSMGTGTKCIGQSKMRESGDILNDSHAEIIARRSFQRYLLHQLHLAAVLKEDSIFVPGTQRGLWRLRPDLSFVFFSSHTPCGDASIIPMLEFEEQPCCPVIRSWANNSPVQETENLEDSKDKRNCEDPASPVAKKMRLGTPARSLSNCVAHHGTQESGPVKPDVSSSDLTKEEPDAANGIASGSFRVVDVYRTGAKCVPGETGDLREPGAAYHQVGLLRVKPGRGDRTCSMSCSDKMARWNVLGCQGALLMHFLEKPIYLSAVVIGKCPYSQEAMRRALTGRCEETLVLPRGFGVQELEIQQSGLLFEQSRCAVHRKRGDSPGRLVPCGAAISWSAVPQQPLDVTANGFPQGTTKKEIGSPRARSRISKVELFRSFQKLLSSIADDEQPDSIRVTKKLDTYQEYKDAASAYQEAWGALRRIQPFASWIRNPPDYHQFK(配列番号82)(下線:核酸編集ドメイン)
ヒトADAT-1:
MWTADEIAQLCYEHYGIRLPKKGKPEPNHEWTLLAAVVKIQSPADKACDTPDKPVQVTKEVVSMGTGTKCIGQSKMRKNGDILNDSHAEVIARRSFQRYLLHQLQLAATLKEDSIFVPGTQKGVWKLRRDLIFVFFSSHTPCGDASIIPMLEFEDQPCCPVFRNWAHNSSVEASSNLEAPGNERKCEDPDSPVTKKMRLEPGTAAREVTNGAAHHQSFGKQKSGPISPGIHSCDLTVEGLATVTRIAPGSAKVIDVYRTGAKCVPGEAGDSGKPGAAFHQVGLLRVKPGRGDRTRSMSCSDKMARWNVLGCQGALLMHLLEEPIYLSAVVIGKCPYSQEAMQRALIGRCQNVSALPKGFGVQELKILQSDLLFEQSRSAVQAKRADSPGRLVPCGAAISWSAVPEQPLDVTANGFPQGTTKKTIGSLQARSQISKVELFRSFQKLLSRIARDKWPHSLRVQKLDTYQEYKEAASSYQEAWSTLRKQVFGSWIRNPPDYHQFK(配列番号83)
(下線:核酸編集ドメイン)
いくつかの態様において、酵素ドメインは転写活性化因子の1つまたは2つ以上を含む。例えば、いくつかの態様において、転写活性化因子ドメインを有する例示的なdCas9融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[NLS]-[Cas9]-[(転写活性化因子)]-[COOH]、
[NH]-[NLS]-[(転写活性化因子)]-[Cas9]--[COOH]、
[NH]-[Cas9]-[(転写活性化因子)]-[COOH]、または
[NH]-[(転写活性化因子)]-[Cas9]-[COOH]
を含み、NLSは核局在シグナルであり、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端である。いくつかの態様において、融合蛋白質は転写活性化因子の1つまたは2つ以上のリピートを含み、例えばn=1~10である(例えば、nは1、2、3、4、5、6、7、8、9、または10である)。いくつかの態様において、n=1~20である。いくつかの態様において、リンカーがdCas9と転写活性化因子ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、リンカーがNLSと転写活性化因子および/またはdCas9ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、NLSは転写活性化因子および/またはdCas9ドメインのC末端に位置する。いくつかの態様において、NLSは転写活性化因子ドメインとdCas9ドメインとの間に位置する。配列タグなどの追加の特徴もまた存在し得る。いくつかの態様において、転写活性化因子は、VP64(配列番号84または配列番号35)、VP16(配列番号85)、およびp65(配列番号86)からなる群から選択される。いくつかの態様において、dCas9-VP64融合蛋白質は(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号87のアミノ酸配列を含むか、または(例えば6×Hisタグ有りまたは無しで)配列番号87のアミノ酸配列と少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも98%、もしくは少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む。
VP64
GSGRADALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLIN(配列番号84)
VP16
APPTDVSLGDELHLDGEDVAMAHADALDDFDLDMLGDGDSPGPGFTPHDSAPYGALDMADFEFEQMFTDALGIDEYGGEFPGIRR(配列番号85)
p65:
PSGQISNQALALAPSSAPVLAQTMVPSSAMVPLAQPPAPAPVLTPGPPQSLSAPVPKSTQAGEGTLSEALLHLQFDADEDLGALLGNSTDPGVFTDLASVDNSEFQQLLNQGVSMSHSTAEPMLMEYPEAITRLVTGSQRPPDPAPTPLGTSGLPNGLSGDEDFSSIADMDFSALLSQISSSGQ(配列番号86)
dCas9-VP64-6×His:
MDKKYSIGLAIGTNSVGWAVITDEYKVPSKKFKVLGNTDRHSIKKNLIGALLFDSGETAEATRLKRTARRRYTRRKNRICYLQEIFSNEMAKVDDSFFHRLEESFLVEEDKKHERHPIFGNIVDEVAYHEKYPTIYHLRKKLVDSTDKADLRLIYLALAHMIKFRGHFLIEGDLNPDNSDVDKLFIQLVQTYNQLFEENPINASGVDAKAILSARLSKSRRLENLIAQLPGEKKNGLFGNLIALSLGLTPNFKSNFDLAEDAKLQLSKDTYDDDLDNLLAQIGDQYADLFLAAKNLSDAILLSDILRVNTEITKAPLSASMIKRYDEHHQDLTLLKALVRQQLPEKYKEIFFDQSKNGYAGYIDGGASQEEFYKFIKPILEKMDGTEELLVKLNREDLLRKQRTFDNGSIPHQIHLGELHAILRRQEDFYPFLKDNREKIEKILTFRIPYYVGPLARGNSRFAWMTRKSEETITPWNFEEVVDKGASAQSFIERMTNFDKNLPNEKVLPKHSLLYEYFTVYNELTKVKYVTEGMRKPAFLSGEQKKAIVDLLFKTNRKVTVKQLKEDYFKKIECFDSVEISGVEDRFNASLGTYHDLLKIIKDKDFLDNEENEDILEDIVLTLTLFEDREMIEERLKTYAHLFDDKVMKQLKRRRYTGWGRLSRKLINGIRDKQSGKTILDFLKSDGFANRNFMQLIHDDSLTFKEDIQKAQVSGQGDSLHEHIANLAGSPAIKKGILQTVKVVDELVKVMGRHKPENIVIEMARENQTTQKGQKNSRERMKRIEEGIKELGSQILKEHPVENTQLQNEKLYLYYLQNGRDMYVDQELDINRLSDYDVDAIVPQSFLKDDSIDNKVLTRSDKNRGKSDNVPSEEVVKKMKNYWRQLLNAKLITQRKFDNLTKAERGGLSELDKAGFIKRQLVETRQITKHVAQILDSRMNTKYDENDKLIREVKVITLKSKLVSDFRKDFQFYKVREINNYHHAHDAYLNAVVGTALIKKYPKLESEFVYGDYKVYDVRKMIAKSEQEIGKATAKYFFYSNIMNFFKTEITLANGEIRKRPLIETNGETGEIVWDKGRDFATVRKVLSMPQVNIVKKTEVQTGGFSKESILPKRNSDKLIARKKDWDPKKYGGFDSPTVAYSVLVVAKVEKGKSKKLKSVKELLGITIMERSSFEKNPIDFLEAKGYKEVKKDLIIKLPKYSLFELENGRKRMLASAGELQKGNELALPSKYVNFLYLASHYEKLKGSPEDNEQKQLFVEQHKHYLDEIIEQISEFSKRVILADANLDKVLSAYNKHRDKPIREQAENIIHLFTLTNLGAPAAFKYFDTTIDRKRYTSTKEVLDATLIHQSITGLYETRIDLSQLGGDGSPKKKRKVSSDYKDHDGDYKDHDIDYKDDDDKAAGGGGSGRADALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLGSDALDDFDLDMLHHHHHH(配列番号87)
いくつかの態様において、酵素ドメインは転写抑制因子の1つまたは2つ以上を含む。例えば、いくつかの態様において、転写抑制因子ドメインを有する例示的なdCas9融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[NLS]-[Cas9]-[(転写抑制因子)]-[COOH]、
[NH]-[NLS]-[(転写抑制因子)]-[Cas9]--[COOH]、
[NH]-[Cas9]-[(転写抑制因子)]-[COOH]、または
[NH]-[(転写抑制因子)]-[Cas9]-[COOH]、
を含み、NLSは核局在シグナルであり、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端である。いくつかの態様において、融合蛋白質は転写抑制因子の1つまたは2つ以上のリピートを含み、例えばn=1~10である(例えば、nは1、2、3、4、5、6、7、8、9、または10である)。いくつかの態様において、n=1~20である。いくつかの態様において、リンカーがdCas9と転写抑制因子ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、リンカーがNLSと転写抑制因子および/またはdCas9ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、NLSは転写抑制因子および/またはdCas9ドメインのC末端に位置する。いくつかの態様において、NLSは転写抑制因子ドメインとdCas9ドメインとの間に位置する。配列タグなどの追加の特徴もまた存在し得る。いくつかの態様において、転写抑制因子は、Kox1のKRAB(Kruppel関連ボックス)ドメイン、SID(mSin3相互作用ドメイン)、HP1αのCS(クロモシャドー)ドメイン、またはHes1のWRPWドメインからなる群から選択される。これらおよび他の抑制因子ドメインは当分野において公知であり、いくつかの態様において、Urrutia, KRAB-containing zinc-finger repressor proteins. Genome Biol. 2003;4(10):231、Gilbert et al. CRISPR-mediated modular RNA-guided regulation of transcription in eukaryotes. Cell. 2013; 154, 442-451、Konermann et al., Optical control of mammalian endogenous transcription and epigenetic states. Nature. 2013; 500, 472-476、およびU.S.2014/0186958A1として公開されている公開U.S.特許出願U.S.S.N.14/105,017に記載されているものに対応し、その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。いくつかの態様において、転写抑制因子ドメインはKRABドメインの1つまたは2つ以上のリピート(例えば、2、3、4、5、6、7、8、9、または10個のリピート)を含む。いくつかの態様において、KRABドメインは、配列番号88~91からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、転写抑制因子ドメインはSID蛋白質の1つまたは2つ以上のリピートを含む。いくつかの態様において、SID蛋白質は、配列番号80として示されているアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、抑制因子ドメインは、SID蛋白質の2、3、4、5、6、7、8、9、または10個のリピートを含む(例えば、配列番号92)。いくつかの態様において、抑制因子ドメインはSIDの4つのリピート(例えばSID4×。配列番号93)を含む。
KRAB(ヒト。GenBank:AAD20972.1):
MNMFKEAVTFKDVAVAFTEEELGLLGPAQRKLYRDVMVENFRNLLSVGHPPFKQDVSPIERNEQLWIMTTATRRQGNLDTLPVKALLLYDLAQT(配列番号88)
部分的なKRAB蛋白質ドメイン(ヒト。GenBank:CAB52478.1):
EQVSFKDVCVDFTQEEWYLLDPAQKILYRDVILENYSNLVSVGYCITKPEVIFKIEQGEEPWILEKGFPSQCHP(配列番号89)
部分的なKRABAドメイン(ヒト。GenBank:AAB03530.1):
EAVTFKDVAVVFTEEELGLLDPAQRKLYRDVMLENFRNLLSV(配列番号90)
KRAB(マウス。C2H2型ドメイン含有蛋白質。GenBank:CAM27971.1):
MDLVTYDDVHVNFTQDEWALLDPSQKSLYKGVMLETYKNLTAIGYIWEEHTIEDHFQTSRSHGSNKKTH(配列番号91)
SID抑制因子ドメイン:
GSGMNIQMLLEAADYLERREREAEHGYASMLP(配列番号92)
SID4×抑制因子ドメイン:
GSGMNIQMLLEAADYLERREREAEHGYASMLPGSGMNIQMLLEAADYLERREREAEHGYASMLPGSGMNIQMLLEAADYLERREREAEHGYASMLPGSGMNIQMLLEAADYLERREREAEHGYASMLPSR(配列番号93)
いくつかの態様において、酵素ドメインはエピジェネティック修飾因子またはその触媒ドメインを含む。例えば、いくつかの態様において、エピジェネティック修飾因子またはドメインを有する例示的なdCas9融合蛋白質の一般的な構造は、構造
[NH]-[NLS]-[Cas9]-[エピジェネティック修飾因子]-[COOH]、
[NH]-[NLS]-[エピジェネティック修飾因子]-[Cas9]-[COOH]、
[NH]-[Cas9]-[エピジェネティック修飾因子]-[COOH]、または
[NH]-[エピジェネティック修飾因子]-[Cas9]-[COOH]、
を含み、NLSは核局在シグナルであり、NHは融合蛋白質のN末端であり、COOHは融合蛋白質のC末端である。いくつかの態様において、リンカーが、dCas9とエピジェネティック修飾因子ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、リンカーが、NLSとエピジェネティック修飾因子および/またはdCas9ドメインとの間に挿入される。いくつかの態様において、NLSはエピジェネティック修飾因子および/またはdCas9ドメインのC末端に位置する。いくつかの態様において、NLSはエピジェネティック修飾因子ドメインとdCas9ドメインとの間に位置する。配列タグなどの追加の特徴もまた存在し得る。エピジェネティック修飾因子は当分野において周知であり、DNAメチル化(および脱メチル化)またはヒストン修飾(例えば、ヒストンメチル化/脱メチル化、アセチル化/脱アセチル化、ユビキチン化、リン酸化、SUMO化など)を典型的には触媒する。1つ、2つ以上のエピジェネティックな修飾の存在は1つまたは2つ以上の遺伝子の転写活性に影響を及ぼし得、例えば遺伝子を「オン」状態から「オフ」状態に変え、逆もまた同様である。エピジェネティック修飾因子は、ヒストン脱メチル化酵素、ヒストンメチルトランスフェラーゼ、ヒドロキシラーゼ、ヒストン脱アセチル化酵素、およびヒストンアセチルトランスフェラーゼを包含するが、これに限定されない。例示的なエピジェネティック修飾蛋白質は、Konermann et al., Optical control of mammalian endogenous transcription and epigenetic states. Nature. 2013; 500, 472-476、Mendenhall et al., Locus-specific editing of histone modifications at endogenous enhancers. Nat. Biotechnol. 2013; 31, 1133-1136、およびMaeder et al., Targeted DNA demethylation and activation of endogenous genes using programmable TALE-TET1 fusion proteins. Nat. Biotechnol. 2013; 31, 1137-1142に見いだされ得る。それぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる。いくつかの態様において、エピジェネティック修飾因子ドメインはLSD1(リシン(K)特異的脱メチル化酵素1A)ヒストン脱メチル化酵素であり、これは、いくつかの態様において、配列番号94または配列番号95として示されるアミノ酸配列を全体的にまたは部分的に含む。いくつかの態様において、エピジェネティック修飾因子ドメインはTET1ヒドロキシラーゼ触媒ドメインであり、これは、いくつかの態様において、配列番号96として示されるアミノ酸配列を含む。いくつかの態様において、エピジェネティック修飾因子はヒストン脱アセチル化酵素(HDAC)エフェクタードメインである。いくつかの態様において、HDACエフェクタードメインは、Konermann et al., Optical control of mammalian endogenous transcription and epigenetic states. Nature.2013; 500, 472-476の補足の表2、配列番号97~108において提供されているHDACエフェクター蛋白質のいずれかに対応するアミノ酸配列を全体的に、部分的に含む。いくつかの態様において、エピジェネティック修飾因子はヒストンメチルトランスフェラーゼ(HMT)エフェクタードメインである。いくつかの態様において、HMTエフェクタードメインは、Konermann et al., Optical control of mammalian endogenous transcription and epigenetic states. Nature.2013; 500, 472-476の補足の表3、配列番号109~118において提供されているHDACエフェクター蛋白質のいずれかに対応するアミノ酸配列を全体的に、部分的に含む。
LSD1、アイソフォームa(ヒト):
MLSGKKAAAAAAAAAAAATGTEAGPGTAGGSENGSEVAAQPAGLSGPAEVGPGAVGERTPRKKEPPRASPPGGLAEPPGSAGPQAGPTVVPGSATPMETGIAETPEGRRTSRRKRAKVEYREMDESLANLSEDEYYSEEERNAKAEKEKKLPPPPPQAPPEEENESEPEEPSGQAGGLQDDSSGGYGDGQASGVEGAAFQSRLPHDRMTSQEAACFPDIISGPQQTQKVFLFIRNRTLQLWLDNPKIQLTFEATLQQLEAPYNSDTVLVHRVHSYLERHGLINFGIYKRIKPLPTKKTGKVIIIGSGVSGLAAARQLQSFGMDVTLLEARDRVGGRVATFRKGNYVADLGAMVVTGLGGNPMAVVSKQVNMELAKIKQKCPLYEANGQADTVKVPKEKDEMVEQEFNRLLEATSYLSHQLDFNVLNNKPVSLGQALEVVIQLQEKHVKDEQIEHWKKIVKTQEELKELLNKMVNLKEKIKELHQQYKEASEVKPPRDITAEFLVKSKHRDLTALCKEYDELAETQGKLEEKLQELEANPPSDVYLSSRDRQILDWHFANLEFANATPLSTLSLKHWDQDDDFEFTGSHLTVRNGYSCVPVALAEGLDIKLNTAVRQVRYTASGCEVIAVNTRSTSQTFIYKCDAVLCTLPLGVLKQQPPAVQFVPPLPEWKTSAVQRMGFGNLNKVVLCFDRVFWDPSVNLFGHVGSTTASRGELFLFWNLYKAPILLALVAGEAAGIMENISDDVIVGRCLAILKGIFGSSAVPQPKETVVSRWRADPWARGSYSYVAAGSSGNDYDLMAQPITPGPSIPGAPQPIPRLFFAGEHTIRNYPATVHGALLSGLREAGRIADQFLGAMYTLPRQATPGVPAQQSPSM(配列番号94)
LSD1、アイソフォームb(ヒト):
MLSGKKAAAAAAAAAAAATGTEAGPGTAGGSENGSEVAAQPAGLSGPAEVGPGAVGERTPRKKEPPRASPPGGLAEPPGSAGPQAGPTVVPGSATPMETGIAETPEGRRTSRRKRAKVEYREMDESLANLSEDEYYSEEERNAKAEKEKKLPPPPPQAPPEEENESEPEEPSGVEGAAFQSRLPHDRMTSQEAACFPDIISGPQQTQKVFLFIRNRTLQLWLDNPKIQLTFEATLQQLEAPYNSDTVLVHRVHSYLERHGLINFGIYKRIKPLPTKKTGKVIIIGSGVSGLAAARQLQSFGMDVTLLEARDRVGGRVATFRKGNYVADLGAMVVTGLGGNPMAVVSKQVNMELAKIKQKCPLYEANGQAVPKEKDEMVEQEFNRLLEATSYLSHQLDFNVLNNKPVSLGQALEVVIQLQEKHVKDEQIEHWKKIVKTQEELKELLNKMVNLKEKIKELHQQYKEASEVKPPRDITAEFLVKSKHRDLTALCKEYDELAETQGKLEEKLQELEANPPSDVYLSSRDRQILDWHFANLEFANATPLSTLSLKHWDQDDDFEFTGSHLTVRNGYSCVPVALAEGLDIKLNTAVRQVRYTASGCEVIAVNTRSTSQTFIYKCDAVLCTLPLGVLKQQPPAVQFVPPLPEWKTSAVQRMGFGNLNKVVLCFDRVFWDPSVNLFGHVGSTTASRGELFLFWNLYKAPILLALVAGEAAGIMENISDDVIVGRCLAILKGIFGSSAVPQPKETVVSRWRADPWARGSYSYVAAGSSGNDYDLMAQPITPGPSIPGAPQPIPRLFFAGEHTIRNYPATVHGALLSGLREAGRIADQFLGAMYTLPRQATPGVPAQQSPSM(配列番号95)
TET1触媒ドメイン:
SIVAQLSRPDPALAALTNDHLVALACLGGRPALDAVKKGLPHAPALIKRTNRRIPERTSHRVADHAQVVRVLGFFQCHSHPAQAFDDAMTQFGMSGGGSLPTCSCLDRVIQKDKGPYYTHLGAGPSVAAVREIMENRYGQKGNAIRIEIVVYTGKEGKSSHGCPIAKWVLRRSSDEEKVLCLVRQRTGHHCPTAVMVVLIMVWDGIPLPMADRLYTELTENLKSYNGHPTDRRCTLNENRTCTCQGIDPETCGASFSFGCSWSMYFNGCKFGRSPSPRRFRIDPSSPLHEKNLEDNLQSLATRLAPIYKQYAPVAYQNQVEYENVARECRLGSKEGRPFSGVTACLDFCAHPHRDIHNMNNGSTVVCTLTREDNRSLGVIPQDEQLHVLPLYKLSDTDEFGSKEGMEAKIKSGAIEVLAPRRKKRTCFTQPVPRSGKKRAAMMTEVLAHKIRAVEKKPIPRIKRKNNSTTTNNSKPSSLPTLGSNTETVQPEVKSETEPHFILKSSDNTKTYSLMPSAPHPVKEASPGFSWSPKTASATPAPLKNDATASCGFSERSSTPHCTMPSGRLSGANAAAADGPGISQLGEVAPLPTLSAPVMEPLINSEPSTGVTEPLTPHQPNHQPSFLTSPQDLASSPMEEDEQHSEADEPPSDEPLSDDPLSPAEEKLPHIDEYWSDSEHIFLDANIGGVAIAPAHGSVLIECARRELHATTPVEHPNRNHPTRLSLVFYQHKNLNKPQHGFELNKIKFEAKEAKNKKMKASEQKDQAANEGPEQSSEVNELNQIPSHKALTLTHDNVVTVSPYALTHVAGPYNHWV(配列番号96)
HDACエフェクタードメイン
HDAC8(X.laevis):
ASSPKKKRKVEASMSRVVKPKVASMEEMAAFHTDAYLQHLHKVSEEGDNDDPETLEYGLGYDCPITEGIYDYAAAVGGATLTAAEQLIEGKTRIAVNWPGGWHHAKKDEASGFCYLNDAVLGILKLREKFDRVLYVDMDLHHGDGVEDAFSFTSKVMTVSLHKFSPGFFPGTGDVSDIGLGKGRYYSINVPLQDGIQDDKYYQICEGVLKEVFTTFNPEAVVLQLGADTIAGDPMCSFNMTPEGIGKCLKYVLQWQLPTLILGGGGYHLPNTARCWTYLTALIVGRTLSSEIPDHEFFTEYGPDYVLEITPSCRPDRNDTQKVQEILQSIKGNLKRVVEF(配列番号97)
RPD3(S.cerevisiae):
ASSPKKKRKVEASRRVAYFYDADVGNYAYGAGHPMKPHRIRMAHSLIMNYGLYKKMEIYRAKPATKQEMCQFHTDEYIDFLSRVTPDNLEMFKRESVKFNVGDDCPVFDGLYEYCSISGGGSMEGAARLNRGKCDVAVNYAGGLHHAKKSEASGFCYLNDIVLGIIELLRYHPRVLYIDIDVHHGDGVEEAFYTTDRVMTCSFHKYGEFFPGTGELRDIGVGAGKNYAVNVPLRDGIDDATYRSVFEPVIKKIMEWYQPSAVVLQCGGDSLSGDRLGCFNLSMEGHANCVNYVKSFGIPMMVVGGGGYTMRNVARTWCFETGLLNNVVLDKDLPYEF(配列番号98)
MesoLo4(M.loti):
ASSPKKKRKVEASMPLQIVHHPDYDAGFATNHRFPMSKYPLLMEALRARGLASPDALNTTEPAPASWLKLAHAADYVDQVISCSVPEKIEREIGFPVGPRVSLRAQLATGGTILAARLALRHGIACNTAGGSHHARRAQGAGFCTFNDVAVASLVLLDEGAAQNILVVDLDVHQGDGTADILSDEPGVFTFSMHGERNYPVRKIASDLDIALPDGTGDAAYLRRLATILPELSARARWDIVFYNAGVDVHAEDRLGRLALSNGGLRARDEMVIGHFRALGIPVCGVIGGGYSTDVPALASRHAILFEVASTYAEF(配列番号99)
HDAC11(ヒト):
ASSPKKKRKVEASMLHTTQLYQHVPETRWPIVYSPRYNITFMGLEKLHPFDAGKWGKVINFLKEEKLLSDSMLVEAREASEEDLLVVHTRRYLNELKWSFAVATITEIPPVIFLPNFLVQRKVLRPLRTQTGGTIMAGKLAVERGWAINVGGGFHHCSSDRGGGFCAYADITLAIKFLFERVEGISRATIIDLDAHQGNGHERDFMDDKRVYIMDVYNRHIYPGDRFAKQAIRRKVELEWGTEDDEYLDKVERNIKKSLQEHLPDVVVYNAGTDILEGDRLGGLSISPAGIVKRDELVFRMVRGRRVPILMVTSGGYQKRTARIIADSILNLFGLGLIGPESPSVSAQNSDTPLLPPAVPEF(配列番号100)
HDT1(A.thaliana):
ASSPKKKRKVEASMEFWGIEVKSGKPVTVTPEEGILIHVSQASLGECKNKKGEFVPLHVKVGNQNLVLGTLSTENIPQLFCDLVFDKEFELSHTWGKGSVYFVGYKTPNIEPQGYSEEEEEEEEEVPAGNAAKAVAKPKAKPAEVKPAVDDEEDESDSDGMDEDDSDGEDSEEEEPTPKKPASSKKRANETTPKAPVSAKKAKVAVTPQKTDEKKKGGKAANQSEF(配列番号101)
SIRT3(ヒト):
ASSPKKKRKVEASMVGAGISTPSGIPDFRSPGSGLYSNLQQYDLPYPEAIFELPFFFHNPKPFFTLAKELYPGNYKPNVTHYFLRLLHDKGLLLRLYTQNIDGLERVSGIPASKLVEAHGTFASATCTVCQRPFPGEDIRADVMADRVPRCPVCTGVVKPDIVFFGEPLPQRFLLHVVDFPMADLLLILGTSLEVEPFASLTEAVRSSVPRLLINRDLVGPLAWHPRSRDVAQLGDVVHGVESLVELLGWTEEMRDLVQRETGKLDGPDKEF(配列番号102)
HST2(S.cerevisiae):
ASSPKKKRKVEASTEMSVRKIAAHMKSNPNAKVIFMVGAGISTSCGIPDFRSPGTGLYHNLARLKLPYPEAVFDVDFFQSDPLPFYTLAKELYPGNFRPSKFHYLLKLFQDKDVLKRVYTQNIDTLERQAGVKDDLIIEAHGSFAHCHCIGCGKVYPPQVFKSKLAEHPIKDFVKCDVCGELVKPAIVFFGEDLPDSFSETWLNDSEWLREKITTSGKHPQQPLVIVVGTSLAVYPFASLPEEIPRKVKRVLCNLETVGDFKANKRPTDLIVHQYSDEFAEQLVEELGWQEDFEKILTAQGGMGEF(配列番号103)
CobB(E.coli(K12)):
ASSPKKKRKVEASMEKPRVLVLTGAGISAESGIRTFRAADGLWEEHRVEDVATPEGFDRDPELVQAFYNARRRQLQQPEIQPNAAHLALAKLQDALGDRFLLVTQNIDNLHERAGNTNVIHMHGELLKVRCSQSGQVLDWTGDVTPEDKCHCCQFPAPLRPHVVWFGEMPLGMDEIYMALSMADIFIAIGTSGHVYPAAGFVHEAKLHGAHTVELNLEPSQVGNEFAEKYYGPASQVVPEFVEKLLKGLKAGSIAEF(配列番号104)
HST2(C.albicans):
ASSPKKKRKVEASMPSLDDILKPVAEAVKNGKKVTFFNGAGISTGAGIPDFRSPDTGLYANLAKLNLPFAEAVFDIDFFKEDPKPFYTLAEELYPGNFAPTKFHHFIKLLQDQGSLKRVYTQNIDTLERLAGVEDKYIVEAHGSFASNHCVDCHKEMTTETLKTYMKDKKIPSCQHCEGYVKPDIVFFGEGLPVKFFDLWEDDCEDVEVAIVAGTSLTVFPFASLPGEVNKKCLRVLVNKEKVGTFKHEPRKSDIIALHDCDIVAERLCTLLGLDDKLNEVYEKEKIKYSKAETKEIKMHEIEDKLKEEAHLKEDKHTTKVDKKEKQNDANDKELEQLIDKAKAEF(配列番号105)
SIRT5(ヒト):
ASSPKKKRKVEASSSSMADFRKFFAKAKHIVIISGAGVSAESGVPTFRGAGGYWRKWQAQDLATPLAFAHNPSRVWEFYHYRREVMGSKEPNAGHRAIAECETRLGKQGRRVVVITQNIDELHRKAGTKNLLEIHGSLFKTRCTSCGVVAENYKSPICPALSGKGAPEPGTQDASIPVEKLPRCEEAGCGGLLRPHVVWFGENLDPAILEEVDRELAHCDLCLVVGTSSVVYPAAMFAPQVAARGVPVAEFNTETTPATNRFRFHFQGPCGTTLPEALACHENETVSEF(配列番号106)
Sir2A(P.falciparum):
ASSPKKKRKVEASMGNLMISFLKKDTQSITLEELAKIIKKCKHVVALTGSGTSAESNIPSFRGSSNSIWSKYDPRIYGTIWGFWKYPEKIWEVIRDISSDYEIEINNGHVALSTLESLGYLKSVVTQNVDGLHEASGNTKVISLHGNVFEAVCCTCNKIVKLNKIMLQKTSHFMHQLPPECPCGGIFKPNIILFGEVVSSDLLKEAEEEIAKCDLLLVIGTSSTVSTATNLCHFACKKKKKIVEINISKTYITNKMSDYHVCAKFSELTKVANILKGSSEKNKKIMEF(配列番号107)
SIRT6(ヒト):
ASSPKKKRKVEASMSVNYAAGLSPYADKGKCGLPEIFDPPEELERKVWELARLVWQSSSVVFHTGAGISTASGIPDFRGPHGVWTMEERGLAPKFDTTFESARPTQTHMALVQLERVGLLRFLVSQNVDGLHVRSGFPRDKLAELHGNMFVEECAKCKTQYVRDTVVGTMGLKATGRLCTVAKARGLRACRGELRDTILDWEDSLPDRDLALADEASRNADLSITLGTSLQIRPSGNLPLATKRRGGRLVIVNLQPTKHDRHADLRIHGYVDEVMTRLMKHLGLEIPAWDGPRVLERALPPLEF(配列番号108)
HMTエフェクタードメイン
NUE(C.trachomatis):
ASSPKKKRKVEASMTTNSTQDTLYLSLHGGIDSAIPYPVRRVEQLLQFSFLPELQFQNAAVKQRIQRLCYREEKRLAVSSLAKWLGQLHKQRLRAPKNPPVAICWINSYVGYGVFARESIPAWSYIGEYTGILRRRQALWLDENDYCFRYPVPRYSFRYFTIDSGMQGNVTRFINHSDNPNLEAIGAFENGIFHIIIRAIKDILPGEELCYHYGPLYWKHRKKREEFVPQEEEF(配列番号109)
vSET(P.bursariaコレラウイルス):
ASSPKKKRKVEASMFNDRVIVKKSPLGGYGVFARKSFEKGELVEECLCIVRHNDDWGTALEDYLFSRKNMSAMALGFGAIFNHSKDPNARHELTAGLKRMRIFTIKPIAIGEEITISYGDDYWLSRPRLTQNEF(配列番号110)
SUV39H1(ヒト):
ASSPKKKRKVEASNLKCVRILKQFHKDLERELLRRHHRSKTPRHLDPSLANYLVQKAKQRRALRRWEQELNAKRSHLGRITVENEVDLDGPPRAFVYINEYRVGEGITLNQVAVGCECQDCLWAPTGGCCPGASLHKFAYNDQGQVRLRAGLPIYECNSRCRCGYDCPNRVVQKGIRYDLCIFRTDDGRGWGVRTLEKIRKNSFVMEYVGEIITSEEAERRGQIYDRQGATYLFDLDYVEDVYTVDAAYYGNISHFVNHSCDPNLQVYNVFIDNLDERLPRIAFFATRTIRAGEELTFDYNMQVDPVDMESTRMDSNFGLAGLPGSPKKRVRIECKCGTESCRKYLFEF(配列番号111)
DIM5(N.crassa):
ASSPKKKRKVEASMEKAFRPHFFNHGKPDANPKEKKNCHWCQIRSFATHAQLPISIVNREDDAFLNPNFRFIDHSIIGKNVPVADQSFRVGCSCASDEECMYSTCQCLDEMAPDSDEEADPYTRKKRFAYYSQGAKKGLLRDRVLQSQEPIYECHQGCACSKDCPNRVVERGRTVPLQIFRTKDRGWGVKCPVNIKRGQFVDRYLGEIITSEEADRRRAESTIARRKDVYLFALDKFSDPDSLDPLLAGQPLEVDGEYMSGPTRFINHSCDPNMAIFARVGDHADKHIHDLALFAIKDIPKGTELTFDYVNGLTGLESDAHDPSKISEMTKCLCGTAKCRGYLWEF(配列番号112)
KYP(A.thaliana):
ASSPKKKRKVEASDISGGLEFKGIPATNRVDDSPVSPTSGFTYIKSLIIEPNVIIPKSSTGCNCRGSCTDSKKCACAKLNGGNFPYVDLNDGRLIESRDVVFECGPHCGCGPKCVNRTSQKRLRFNLEVFRSAKKGWAVRSWEYIPAGSPVCEYIGVVRRTADVDTISDNEYIFEIDCQQTMQGLGGRQRRLRDVAVPMNNGVSQSSEDENAPEFCIDAGSTGNFARFINHSCEPNLFVQCVLSSHQDIRLARVVLFAADNISPMQELTYDYGYALDSVHEF(配列番号113)
SUVR4(A.thaliana):
ASSPKKKRKVEASQSAYLHVSLARISDEDCCANCKGNCLSADFPCTCARETSGEYAYTKEGLLKEKFLDTCLKMKKEPDSFPKVYCKDCPLERDHDKGTYGKCDGHLIRKFIKECWRKCGCDMQCGNRVVQRGIRCQLQVYFTQEGKGWGLRTLQDLPKGTFICEYIGEILTNTELYDRNVRSSSERHTYPVTLDADWGSEKDLKDEEALCLDATICGNVARFINHRCEDANMIDIPIEIETPDRHYYHIAFFTLRDVKAMDELTWDYMIDFNDKSHPVKAFRCCCGSESCRDRKIKGSQGKSIERRKIVSAKKQQGSKEVSKKRKEF(配列番号114)
Set4(C.elegans):
ASSPKKKRKVEASMQLHEQIANISVTFNDIPRSDHSMTPTELCYFDDFATTLVVDSVLNFTTHKMSKKRRYLYQDEYRTARTVMKTFREQRDWTNAIYGLLTLRSVSHFLSKLPPNKLFEFRDHIVRFLNMFILDSGYTIQECKRYSQEGHQGAKLVSTGVWSRGDKIERLSGVVCLLSSEDEDSILAQEGSDFSVMYSTRKRCSTLWLGPGAYINHDCRPTCEFVSHGSTAHIRVLRDMVPGDEITCFYGSEFFGPNNIDCECCTCEKNMNGAFSYLRGNENAEPIISEKKTKYELRSRSEF(配列番号115)
Set1(C.elegans):
ASSPKKKRKVEASMKVAAKKLATSRMRKDRAAAASPSSDIENSENPSSLASHSSSSGRMTPSKNTRSRKGVSVKDVSNHKITEFFQVRRSNRKTSKQISDEAKHALRDTVLKGTNERLLEVYKDVVKGRGIRTKVNFEKGDFVVEYRGVMMEYSEAKVIEEQYSNDEEIGSYMYFFEHNNKKWCIDATKESPWKGRLINHSVLRPNLKTKVVEIDGSHHLILVARRQIAQGEELLYDYGDRSAETIAKNPWLVNTEF(配列番号116)
SETD8(ヒト)
ASSPKKKRKVEASSCDSTNAAIAKQALKKPIKGKQAPRKKAQGKTQQNRKLTDFYPVRRSSRKSKAELQSEERKRIDELIESGKEEGMKIDLIDGKGRGVIATKQFSRGDFVVEYHGDLIEITDAKKREALYAQDPSTGCYMYYFQYLSKTYCVDATRETNRLGRLINHSKCGNCQTKLHDIDGVPHLILIASRDIAAGEELLYDYGDRSKASIEAFPWLKHEF(配列番号117)
TgSET8(T.gondii):
ASSPKKKRKVEASASRRTGEFLRDAQAPSRWLKRSKTGQDDGAFCLETWLAGAGDDAAGGERGRDREGAADKAKQREERRQKELEERFEEMKVEFEEKAQRMIARRAALTGEIYSDGKGSKKPRVPSLPENDDDALIEIIIDPEQGILKWPLSVMSIRQRTVIYQECLRRDLTACIHLTKVPGKGRAVFAADTILKDDFVVEYKGELCSEREAREREQRYNRSKVPMGSFMFYFKNGSRMMAIDATDEKQDFGPARLINHSRRNPNMTPRAITLGDFNSEPRLIFVARRNIEKGEELLVDYGERDPDVIKEHPWLNSEF(配列番号118)
当業者は、例示的なCas9蛋白質(例えば、本明細書に記載される例示的なCas9ヌクレアーゼ、そのバリアントおよび融合体を包含する)のいずれかが、本開示の技術を用いて細胞に送達され得るということと、本開示がこの点で限定されないということを理解するであろう。
ヌクレアーゼエフェクター蛋白質
TALEヌクレアーゼまたはTALENは、DNA切断ドメイン(例えばFokIドメイン)と結びつけられた転写活性化因子様エフェクターDNA結合ドメインを含む人工ヌクレアーゼである。操作されたTALE構築物を生成するためのいくつものモジュール的なアセンブリスキームが報告されている(Zhang, Feng; et.al. (February 2011).「Efficient construction of sequence-specific TAL effectors for modulating mammalian transcription」. Nature Biotechnology 29 (2): 149-53、Geiβler, R.; Scholze, H.; Hahn, S.; Streubel, J.; Bonas, U.; Behrens, S. E.; Boch, J. (2011), Shiu, Shin-Han. ed.「Transcriptional Activators of Human Genes with Programmable DNA-Specificity」. PLoS ONE 6 (5): e19509、Cermak, T.; Doyle, E. L.; Christian, M.; Wang, L.; Zhang, Y.; Schmidt, C.; Baller, J. A.; Somia, N. V. et al. (2011). 「Efficient design and assembly of custom TALEN and other TAL effector-based constructs for DNA targeting」. Nucleic Acids Research、Morbitzer, R.; Elsaesser, J.; Hausner, J.; Lahaye, T. (2011).「Assembly of custom TALE-type DNA binding domains by modular cloning」. Nucleic Acids Research、Li, T.; Huang, S.; Zhao, X.; Wright, D. A.; Carpenter, S.; Spalding, M. H.; Weeks, D. P.; Yang, B. (2011).「Modularly assembled designer TAL effector nucleases for targeted gene knockout and gene replacement in eukaryotes」. Nucleic Acids Research.、Weber, E.; Gruetzner, R.; Werner, S.; Engler, C.; Marillonnet, S. (2011). Bendahmane, Mohammed, ed.「Assembly of Designer TAL Effectors by Golden Gate Cloning」. PLoS ONE 6 (5): e19722。そのそれぞれの全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。当業者は、TALEヌクレアーゼは、高い特異性でほとんどいずれかのゲノム配列をターゲット化するように操作され得るということ、およびかかる操作されたヌクレアーゼは、細胞内ゲノムを操作するための本技術の態様に用いられ得る(例えば、TALENが細胞内ゲノム中のそのターゲット配列に結合して切断するための好適な状況で、本明細書において開示される方法または戦略によってそれぞれのTALENを送達することによる)ということを理解するであろう。いくつかの態様において、送達されるTALENは、疾患または障害と結びついた遺伝子またはアレルをターゲット化する。いくつかの態様において、対象へのTALENの送達は対象に治療上の利益を供与する。
ジンクフィンガーヌクレアーゼは、DNA切断ドメインとジンクフィンガーDNA結合ドメインとを含む人工ヌクレアーゼの一クラスである。いくつかの態様において、DNA切断ドメインは制限エンドヌクレアーゼの(例えばFokIの)非特異的DNA切断ドメインである。いくつかの態様において、DNA切断ドメインは、同じ型の第2のDNA切断ドメインと二量体化したときにのみ二本鎖DNAを切断するドメインである。いくつかの態様において、DNA切断ドメインはリンカー(例えばペプチドリンカー)を介してジンクフィンガードメインのC末端に融合される。いくつかの態様において、ジンクフィンガードメインは約3~約6つのジンクフィンガーを含み、長さ約9~20ヌクレオチドのターゲット配列を特異的に認識して結合する。いくつかの態様において、複数のジンクフィンガーヌクレアーゼ分子が、本発明によって提供されるシステムまたは方法によってターゲット細胞に送達され、1つのジンクフィンガーヌクレアーゼ分子のジンクフィンガードメインが、第2のジンクフィンガーヌクレアーゼ分子のターゲット配列の近接した近位にあるターゲット配列に結合する。いくつかの態様において、互いに近接した近位にあるターゲット配列に結合するジンクフィンガーヌクレアーゼ分子のジンクフィンガードメインは異なる。いくつかの態様において、本明細書において提供されるシステムまたは方法によって細胞に送達されるジンクフィンガーヌクレアーゼ分子は、別のジンクフィンガーヌクレアーゼ分子のターゲット配列の近接した近位にあるターゲット核酸配列に結合し、その結果、分子のDNA切断ドメインは2つのターゲット配列間の部位において二量体化して、DNA分子を切断する。
いくつかの態様において、ターゲット細胞のゲノムは、本明細書において開示される戦略または方法によって細胞に送達されるヌクレアーゼによって(例えば、TALENもしくはジンクフィンガーヌクレアーゼ、または複数のかかるヌクレアーゼもしくはその組み合わせによって)編集される。いくつかの態様において、一または二本鎖切断がヌクレアーゼによってターゲット細胞のゲノム中の特異的な部位に導入され、ターゲット化されたゲノム配列の破壊をもたらす。いくつかの態様において、ターゲット化されるゲノム配列は遺伝子のコード領域内の核酸配列である。いくつかの態様において、ヌクレアーゼによって導入される鎖切断は、コードされる遺伝子産物の発現を損なうターゲット遺伝子内の変異につながる。いくつかの態様において、核酸がヌクレアーゼと一緒に細胞に共送達される。いくつかの態様において、核酸は、ヌクレアーゼターゲット部位に隣接する配列と同一または相同である配列を含む。いくつかのかかる態様において、ヌクレアーゼによって実現された鎖切断は、細胞内DNA修復機構によって修復され、切断部位において細胞内DNA中に共送達された核酸の全てまたは一部を導入し、共送達された核酸またはその一部のターゲット化された挿入をもたらす。いくつかの態様において挿入は、病原性のアレルの破壊または修復をもたらす。いくつかの態様において、挿入は、好適なアッセイ、例えばDNAシーケンシングアッセイ、サザンブロットアッセイ、または共送達される核酸によってコードされるレポーター遺伝子(例えば、蛍光蛋白質もしくは抗生物質に対する耐性)についてのアッセイによって検出される。いくつかの態様において、核酸が超荷電蛋白質への結びつきによって共送達される。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は機能的なエフェクター蛋白質(例えばヌクレアーゼ)ともまた結びつけられる。いくつかの態様において、ターゲット細胞へのヌクレアーゼの送達は遺伝子の機能の臨床上または治療上有益な破壊をもたらす。
いくつかの態様において、対象からの細胞が得られ、ヌクレアーゼまたは他のエフェクター蛋白質は、本明細書において提供されるシステムまたは方法によってエクスビボで細胞に送達される。いくつかの態様において、処置された細胞は、望まれるヌクレアーゼによって媒介されるゲノム編集イベントが実現した細胞について選択される。いくつかの態様において、望まれるゲノム変異または変化を持っている処置された細胞は、それらが得られた対象に戻される。
特異的な配列をターゲット化するヌクレアーゼ(例えば、TALE、またはジンクフィンガーヌクレアーゼ)の操作、生成、および単離、ならびに特異的なターゲット配列において細胞内ゲノムを編集することのための方法は、当分野において周知である(例えば、Mani et al., Biochemical and Biophysical Research Communications 335:447-457, 2005、Perez et al., Nature Biotechnology 26:808-16, 2008、Kim et al., Genome Research, 19: 1279-88, 2009、Urnov et al., Nature 435:646-51, 2005、Carroll et al., Gene Therapy 15: 1463-68, 2005、Lombardo et al., Nature Biotechnology 25: 1298-306, 2007、Kandavelou et al., Biochemical and Biophysical Research Communications 388:56-61, 2009、およびHockemeyer et al., Nature Biotechnology 27(9):851-59, 2009、さらには各ヌクレアーゼについてそれぞれの項に記述されている参照を参照)。当業者は、本明細書において提供される手引きに基づいて、本開示の文脈への使用に好適な方法を確かめる能力があるであろう。
TALEエフェクター蛋白質
いくつかの態様において、TALEドメインを含むエフェクター蛋白質は、本明細書において提供されるシステムまたは方法によってターゲット細胞に送達される。いくつかの態様において、TALEエフェクター(例えば、TALEのDNA結合ドメインと異種転写活性化因子または抑制因子ドメインとを含む、操作されたTALE転写因子)は、本発明の側面によって提供されるシステムまたは方法によって細胞に送達される。いくつかの態様において、TALEエフェクター(例えば転写因子)は、細胞内の転写因子のターゲット遺伝子の転写を活性化または阻害するために充分な量で細胞に送達される。いくつかの態様において、転写因子は、ターゲット細胞の表現型の変化(例えば、細胞機能の変化または発生能の変化)を実現するために充分な量および期間で送達される。例示的なTALE転写因子が本明細書に記載されており、当業者は、本明細書において提供される手引きおよび当分野におけるかかるTALE転写因子の知識に基づいて追加の好適なTALE転写因子を同定する能力があるであろう。
いくつかの態様において、ターゲット細胞(例えば体細胞)は、本明細書において提供される超荷電蛋白質と結びついたTALE転写因子またはかかる因子の組み合わせと接触させられる。いくつかの態様において、ターゲット細胞は初代体細胞であり、超荷電蛋白質と結びついたTALE転写因子とインビトロまたはエクスビボで接触させられる。いくつかの態様において、TALE転写因子は、例えば本明細書に記載される正に荷電した超荷電蛋白質と結びつく。いくつかの態様において、TALE転写因子は、例えば本明細書に記載される負に荷電した超荷電蛋白質と結びつく。いくつかの態様において、TALE転写因子は、例えば本明細書に記載されるカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーと結びつく。いくつかの態様において、TALE転写因子は、負に荷電した超荷電蛋白質と例えば本明細書に記載されるカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーと結びつく。
いくつかの態様において、ターゲット細胞は、本明細書において提供される超荷電蛋白質(ならびに任意でカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマー)と結びついたTALE転写因子と接触または反復的に接触させられ、細胞表現型または遺伝子発現の望まれる変化が検出される。いくつかの態様において、ターゲット細胞は、望まれる細胞表現型の形成が検出されるまで、本明細書において提供される超荷電蛋白質(ならびに任意でカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマー)と結びついたTALE転写因子と反復的に接触させられる。細胞表現型および遺伝子発現を検出するための方法は当業者に周知であり、例えば、良く確立された方法(例えば、免疫組織化学、蛍光活性化セルソーティング(FACS)、または蛍光顕微鏡法)によるマーカー遺伝子発現の検出および形態分析を包含する。いくつかの態様において、ターゲット細胞は、少なくとも3時間、少なくとも6時間、少なくとも12時間、少なくとも1日、少なくとも2日、少なくとも3日、少なくとも4日、少なくとも5日、少なくとも6日、少なくとも7日、少なくとも10~12日、少なくとも12~15日、少なくとも15~20日、少なくとも20~25日、少なくとも25~30日、少なくとも30~40日、少なくとも40~50日、少なくとも50~60日、少なくとも60~70、または少なくとも70~100日の期間、本明細書において提供される超荷電蛋白質と結びついたTALE転写因子と接触させられる。
いくつかの態様において、ターゲット細胞は、異なる細胞状態に向けて細胞をプログラミングするために有効な量および期間で、本明細書において提供される超荷電蛋白質(ならびに任意でカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマー)と結びついたTALE転写因子と接触させられる。当業者には明らかであろう通り、細胞をプログラミングまたはリプログラミングするために必要な量は、様々な因子(例えば細胞型および処置スケジュール)に依存するであろう。一般的に、本明細書において提供されるシステムまたは方法によるターゲット体細胞へのTALE転写因子の送達は、有意な毒性が観察され得る濃度よりも下の濃度においてであろう。臨界濃度は、例えば特定のTALE転写因子、それが結びつけられる超荷電蛋白質、結びつきの型、および処置されようとする細胞の型に依存するであろう。
特定の細胞型への送達のための、超荷電蛋白質(ならびに任意でカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマー)と結びついた機能的なエフェクター蛋白質の有用な濃度は、慣例の実験法によって当業者によって確定され得る。いくつかの態様において、ターゲット細胞は、約1pM~約1μMの濃度で、超荷電蛋白質(ならびに任意でカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマー)と結びついた機能的なエフェクター蛋白質とインビトロまたはエクスビボで接触させられる。いくつかの態様において、ターゲット細胞は、約1pM、約2.5pM、約5pM、約7.5pM、約10pM、約20pM、約25pM、約30pM、約40pM、約50pM、約60pM、約70pM、約75pM、約80pM、約90pM、約100pM、約200pM、約250pM、約300pM、約400pM、約500pM、約600pM、約700pM、約750pM、約800pM、約900pM、約1nM、約2nM、約3nM、約4nM、約5nM、約6nM、約7nM、約8nM、約9nM、約10nM、約20nM、約25nM、約30nM、約40nM、約50nM、約60nm、約70nM、約75nM、約80nM、約90nM、約100nM、約200nM、約250nM、約300nM、約400nM、約500nM、約600nM、約700nM、約750nM、約800nM、約900nM、または約1μMの濃度で、超荷電蛋白質と結びついた機能的なエフェクター蛋白質とインビトロまたはエクスビボで接触させられる。機能的なエフェクター蛋白質に対するターゲット細胞の有用な暴露、および必要な場合には機能的なエフェクター蛋白質の非存在下での投与後のインキュベーションの時間、さらには望まれる生物学的効果(例えば、遺伝子転写の変化、送達されたヌクレアーゼによるターゲット部位の切断など)または望まれる細胞表現型を達成するために有用な投与/インキュベーションサイクル数もまた、慣例の実験法によって当業者によって確定され得る。
いくつかの態様において、本明細書において提供されるシステムまたは方法による機能的なエフェクター蛋白質の送達のためのターゲット細胞は、対象からの生検によって得られた初代細胞である。いくつかの態様において、対象は疾患を有すると診断される。いくつかの態様において、疾患は、特異的な細胞型(例えば神経細胞)の減損した機能によって特徴づけられる変性疾患である。いくつかの態様において、本明細書において開示される戦略もしくは方法に従って機能的なエフェクター蛋白質によって処置される細胞、またはかかる細胞の子孫は、細胞補充治療手法に用いられる。いくつかの態様において、処置された細胞は、自家細胞補充治療手法において体細胞が得られた対象に投与される。
いくつかの態様において、機能的なエフェクター蛋白質(例えば、細胞を1つの分化状態から別の状態に変換する能力があるTALE転写因子)は、本明細書において提供されるシステムまたは方法によって、インビトロまたはインビボでターゲット細胞に送達される。分化転換を実現する転写因子は当分野において公知である(例えば、Zhou et al., Nature 455:627-33, 2008参照)。いくつかの態様において、PPARγまたはPRDM16の発現を調節するTALE転写因子が、本発明者によって提供されるシステムまたは方法によって線維芽細胞に送達される。それらの転写因子の発現は、褐色脂肪または白色脂肪細胞状態に向かう線維芽細胞のプログラミングにおける中枢的なステップであるということが当分野において公知である。いくつかの態様において、プログラミングされた褐色脂肪細胞が、褐色脂肪細胞の必要がある対象から得られた線維芽細胞から生成されて、対象に投与される(例えば、対象が関わる細胞補充治療手法に用いられる)。
複合体の形成
本発明は、送達されるべき1つまたは2つ以上の機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む複合体を提供する。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、非共有結合的な相互作用を介して、送達されるべき1つまたは2つ以上の機能的なエフェクター蛋白質と結びつけられる。いくつかの態様において、超荷電蛋白質は、静電気的相互作用を介して1つまたは2つ以上の機能的なエフェクター蛋白質と結びつけられる。ある種の態様において、超荷電蛋白質は正味の正の総電荷を有し、送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質は正味の負の総電荷を有する。いくつかの態様において、複合体はカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーをさらに含む。例えば、いくつかの態様において、複合体の超荷電蛋白質は超負荷電であり、カチオン性脂質および/またはポリマーとの結びつきを可能とする。
ある種の態様において、超荷電蛋白質は、共有結合によって、送達されるべき1つまたは2つ以上の機能的なエフェクター蛋白質と結びつけられる。例えば、超荷電蛋白質は、送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質に融合され得る。共有結合的な取り付けは直接的または間接的で(例えばリンカーを介して)あり得る。いくつかの態様において、共有結合的な取り付けは1つまたは2つ以上のリンカーを介して媒介される。いくつかの態様において、リンカーは切断可能なリンカーである。ある種の態様において、切断可能なリンカーはアミド、エステル、またはジスルフィド結合を含む。例えば、リンカーは、細胞内酵素によって切断可能なアミノ酸配列であり得る。ある種の態様において、酵素はプロテアーゼである。他の態様において、酵素はエステラーゼである。いくつかの態様において、酵素は、他の細胞型よりもある種の細胞型において高発現されるものである。例えば、酵素は、非腫瘍細胞よりも腫瘍細胞において高発現されるものであり得る。例示的なリンカーおよびそれらのリンカーを切断する酵素が下で提出されている。
ほんの1つの特定の例を挙げると、+36GFPは、ALAL(配列番号254)などの切断可能なリンカーによって送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質と結びつけられて、+36GFP-(GGS)-ALAL-(GGS)-[機能的なエフェクター蛋白質X](配列番号255)を生成し得る。
ある種の態様において、送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質は、超荷電蛋白質と接触させられて複合体を形成する。いくつかの態様において、複合体の形成はpH7でまたはそのあたりで実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は約pH5、約pH6、約pH7、約pH8、または約pH9で実行される。複合体の形成は、超荷電蛋白質および/または機能的なエフェクター蛋白質の機能に負の影響を及ぼさないpHで典型的には実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は室温で実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は37℃でまたはそのあたりで実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、4℃より下、約4℃、約10℃、約15℃、約20℃、約25℃、約30℃、約35℃、約37℃、約40℃、または40℃よりも高くで実行される。複合体の形成は、超荷電蛋白質および/または機能的なエフェクター蛋白質の機能に負の影響を及ぼさない温度で典型的には実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は無血清培地中で実行される。いくつかの態様において、複合体の形成はCO(例えば、約1%、約2%、約3%、約4%、約5%、約6%以上)の存在下で実行される。
いくつかの態様において、複合体の形成は、約100nMの機能的なエフェクター蛋白質の濃度を用いて実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、約25nM、約50nM、約75nM、約90nM、約100nM、約110nM、約125nM、約150nM、約175nM、または約200nMの機能的なエフェクター蛋白質の濃度を用いて実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、約40nMの超荷電蛋白質の濃度を用いて実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、約10nM、約20nM、約30nM、約40nM、約50nM、約60nM、約70nM、約80nM、約90nM、または約100nMの超荷電蛋白質の濃度を用いて実行される。
いくつかの態様において、複合体の形成は、過剰な機能的なエフェクター蛋白質の条件で実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、約20:1、約10:1、約9:1、約8:1、約7:1、約6:1、約5:1、約4:1、約3:1、約2:1、または約1:1の機能的なエフェクター蛋白質:超荷電蛋白質の比で実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、約3:1の機能的なエフェクター蛋白質:超荷電蛋白質の比で実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、約20:1、約10:1、約9:1、約8:1、約7:1、約6:1、約5:1、約4:1、約3:1、約2:1、または約1:1の超荷電蛋白質:機能的なエフェクター蛋白質の比で実行される。
いくつかの態様において、複合体の形成は、機能的なエフェクター蛋白質と超荷電蛋白質を混合し、(例えば逆位によって)混合物を撹拌することによって実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、機能的なエフェクター蛋白質と超荷電蛋白質を混合し、混合物が静置されることを可能とすることによって実行される。いくつかの態様において、複合体の形成は、薬学的に許容可能な担体または賦形剤の存在下で実行される。いくつかの態様において、複合体は、薬学的に許容可能な担体または賦形剤とさらに組み合わされる。例示的な賦形剤または担体は、水、溶媒、脂質、蛋白質、ペプチド、エンドソーム溶解剤(例えば、クロロキン、ピレンブチル酸)、低分子、炭水化物、緩衝液、天然ポリマー、合成ポリマー(例えば、PLGA、ポリウレタン、ポリエステル、ポリカプロラクトン、ポリホスファゼン)、医薬剤などを包含する。
いくつかの態様において、超荷電蛋白質と機能的なエフェクター蛋白質とを含む複合体は、超荷電蛋白質単独または機能的なエフェクター蛋白質単独よりもゲル電気泳動アッセイにおいてより低速で移動し得る。
応用
本発明は、細胞に送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質(例えば、ヌクレアーゼ、転写活性化因子/抑制因子、リコンビナーゼ、Cas9蛋白質(そのバリアントおよび融合体を包含する)など)と結びついた天然に存在するかまたは操作された超荷電蛋白質を含む組成物、さらにはかかる組成物を用いる方法およびかかる組成物の使用を提供する。ある種の態様において、Cas9蛋白質(例えば、Cas9蛋白質はgRNAと結びついている)とカチオン性脂質とを含む組成物が提供される。ある種の態様において、Cas9蛋白質(例えば、Cas9蛋白質はgRNAと結びつけられている)とカチオン性ポリマーとを含む組成物が提供される。本発明組成物は、例えば細胞への薬剤の送達から恩恵を受け得るいずれかの疾患を処置または予防するために用いられ得る。本発明組成物は、研究目的のために細胞をトランスフェクションまたは処置するためにもまた用いられ得る。
いくつかの態様において、本発明に従う組成物は研究目的のために(例えば、研究の文脈で細胞に機能的なエフェクター蛋白質を効率的に送達するために)用いられ得る。いくつかの態様において、本発明に従う組成物は治療目的のために用いられ得る。いくつかの態様において、本発明に従う組成物は、種々の疾患、障害、および/または状態のいずれかの処置のために用いられ得、それらは以下の1つまたは2つ以上を包含するが、これに限定されない:自己免疫疾患(例えば、糖尿病、狼瘡、多発性硬化症、乾癬、関節リウマチ)、炎症性疾患(例えば、関節炎、骨盤内炎症性疾患)、感染症(例えばウイルス感染(例えば、HIV、HCV、RSV)、細菌感染、真菌感染、敗血症)、神経疾患(例えば、アルツハイマー病、ハンチントン病、自閉症、デュシェンヌ型筋ジストロフィー)、心血管障害(例えば、アテローム硬化症、高コレステロール血症、血栓症、凝固障害、黄斑変性などの血管新生障害)、増殖性障害(例えば、癌、良性新生物)、呼吸器系障害(例えば、慢性閉塞性肺疾患)、消化器障害(例えば、炎症性腸疾患、潰瘍)、筋骨格系疾患(例えば、線維筋痛症、関節炎)、内分泌、代謝、および栄養障害(例えば、糖尿病、骨粗しょう症)、泌尿器障害(例えば、腎疾患)、精神障害(例えば、抑うつ、統合失調症)、皮膚障害(例えば、創傷、湿疹)、血液およびリンパ系疾患(例えば、貧血症、血友病)など。
本発明の組成物は臨床の設定において用いられ得る。例えば、超荷電蛋白質は、治療応用のために用いられ得る機能的なエフェクター蛋白質と結びつけられ得る。かかる機能的なエフェクター蛋白質は、例えばヌクレアーゼまたは転写活性化因子であり得る。Cas9蛋白質およびカチオン性脂質を含む他の組成物もまた治療応用のために用いられ得る。
いくつかの態様において、超荷電蛋白質または超荷電蛋白質と結びついた機能的なエフェクター蛋白質は、検出可能な標識を包含する。それらの分子は、検出、イメージング、病期決定、診断、または患者選別に用いられ得る。好適な標識は、蛍光、化学発光、酵素標識、比色、燐光、密度に基づく標識、例えば、電子密度に基づく標識、および一般的に造影剤、ならびに/または放射性標識を包含する。
医薬組成物
本発明は、送達されるべき少なくとも1つの機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む組成物を提供し、いくつかの態様においてカチオン性脂質によって封入される。Cas9蛋白質とカチオン性脂質とを含む他の組成物が提供される。それゆえに、本発明は医薬組成物を提供し、機能的なエフェクター蛋白質と結びついた1つもしくは2つ以上の超荷電蛋白質ならびに/またはカチオン性脂質および/もしくはカチオン性ポリマーと結びついた1つもしくは2つ以上の機能的なエフェクター蛋白質と、1つまたは2つ以上の薬学的に許容可能な賦形剤とを含む。医薬組成物は、1つまたは2つ以上の追加の治療活性物質を任意で含み得る。いくつかの態様に従って、その必要がある対象に送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質と結びついた1つまたは2つ以上の超荷電蛋白質を含む医薬組成物を投与する方法が、提供される。いくつかの態様において、組成物はヒトに投与される。本開示の目的のためには、言い回し「有効成分」は、本明細書に記載される送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質、または機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質および/もしくはCas9蛋白質を一般的に示す。
本明細書において提供される医薬組成物の記載は、ヒトへの投与に好適である医薬組成物に主として導かれているが、かかる組成物が一般的に全ての種類の動物への投与に好適であるということは当業者によって理解されるであろう。組成物を様々な動物への投与に好適にするための、ヒトへの投与に好適な医薬組成物の改変は周知であり、獣医薬理学の当業者は、せいぜい単なる平均的な実験法によってかかる改変を設計し得るおよび/または実施し得る。医薬組成物の投与が考えられる対象は、ヒトおよび/または他の霊長類、哺乳動物(商業的に関係する哺乳動物、例えばウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ネコ、イヌ、マウス、および/またはラットを包含する)、および/または鳥類(商業的に関係する鳥類、例えばニワトリ、鴨類、ガチョウ、および/またはシチメンチョウを包含する)を包含するが、これに限定されない。
本明細書に記載される医薬組成物の製剤は、薬理学分野において公知のまたは以降で開発されるいずれかの方法によって調製され得る。一般的に、かかる調製法は、有効成分を賦形剤および/または1つもしくは2つ以上の他の補助的な成分と結びつけるステップと、それから、必要なおよび/または望ましい場合には、産物を成形および/またはパッケージングして望まれる単一または複数用量の単位にすることとを包含する。
本発明に従う医薬組成物は、バルクで、単一単位用量として、および/または複数の単一単位用量として調製、パッケージング、および/または販売され得る。本明細書において用いられる場合、「単位用量」は、有効成分の所定量を含む医薬組成物の個別的な量である。有効成分の量は、対象に投与されるであろう有効成分の用量および/またはかかる用量の便利な画分(例えば、かかる用量の1/2もしくは1/3)と一般的には等しい。
本発明に従う医薬組成物中の有効成分、薬学的に許容可能な賦形剤、および/またはいずれかの追加の成分の相対量は、処置される対象のアイデンティティ、サイズ、および/または状態に依存して、さらに組成物が投与されるべき経路に依存して変わるであろう。例えば、組成物は0.1%~100%(w/w)の有効成分を含み得る。
加えて、医薬製剤は薬学的に許容可能な賦形剤を含み得、それらは、本明細書において用いられる場合、いずれかおよび全ての溶媒、分散媒、希釈剤、または他の液体基剤、分散もしくは懸濁助剤、界面活性剤、等張化剤、増粘もしくは乳化剤、保存料、固体結合剤、滑剤、および同類を、望まれる特定の剤形に適するように包含する。Remington's The Science and Practice of Pharmacy, 21st Edition, A. R. Gennaro (Lippincott, Williams & Wilkins, Baltimore, MD, 2006。参照によって本明細書に組み込まれる)は、医薬組成物を処方することに用いられる様々な賦形剤およびその調製のための公知の技術を開示している。いずれかの従来の賦形剤媒体が物質またはその誘導体と不適合性である(例えば、いずれかの望ましくない生物学的効果を生成すること、または別様に、医薬組成物のいずれかの他の構成物(単数または複数)と有害な様式で相互作用することによる)限りを除いて、その使用は本開示の範囲内であると考えられる。
いくつかの態様において、薬学的に許容可能な賦形剤は少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%、少なくとも99%、または100%純粋である。いくつかの態様において、賦形剤はヒトへの使用および獣医学的使用を認可されている。いくつかの態様において、賦形剤は米国食品医薬品局によって認可されている。いくつかの態様において賦形剤は医薬グレードである。いくつかの態様において、賦形剤は米国薬局方(USP)、欧州薬局方(EP)、英国薬局方、および/または国際薬局方の基準に合っている。
医薬組成物の製造に用いられる薬学的に許容可能な賦形剤は、不活性な希釈剤、分散および/もしくは造粒剤、界面活性剤および/もしくは乳化剤、崩壊剤、結合剤、保存料、緩衝剤、滑剤、ならびに/または油を包含するが、これに限定されない。かかる賦形剤は製剤中に任意で包含され得る。ココアバターおよび座薬用ワックス、着色料、コーティング剤、甘味料、香料、および/または芳香剤などの賦形剤は処方者の判断に従って組成物中に存在し得る。
例示的な希釈剤は、炭酸カルシウム、炭酸ナトリウム、リン酸カルシウム、リン酸二カルシウム、硫酸カルシウム、リン酸水素カルシウム、リン酸ナトリウム、ラクトース、スクロース、セルロース、微結晶セルロース、カオリン、マンニトール、ソルビトール、イノシトール、塩化ナトリウム、乾燥澱粉、コーンスターチ、粉糖など、および/またはその組み合わせを包含するが、これに限定されない。
例示的な造粒および/または分散剤は、馬鈴薯澱粉、コーンスターチ、タピオカ澱粉、澱粉グリコール酸ナトリウム、粘土、アルギン酸、グアーガム、シトラスパルプ、寒天、ベントナイト、セルロースおよび木材産物、天然海綿、カチオン交換樹脂、炭酸カルシウム、ケイ酸塩、炭酸ナトリウム、架橋ポリビニルピロリドン(クロスポビドン)、カルボキシメチル澱粉ナトリウム(澱粉グリコール酸ナトリウム)、カルボキシメチルセルロース、架橋カルボキシメチルセルロースナトリウム(クロスカルメロース)、メチルセルロース、糊化澱粉(スターチ1500)、微結晶澱粉、水不溶性澱粉、カルボキシメチルセルロースカルシウム、ケイ酸マグネシウムアルミニウム(ビーガム)、ラウリル硫酸ナトリウム、第4級アンモニウム化合物など、および/またはその組み合わせを包含するが、これに限定されない。
例示的な界面活性剤および/または乳化剤は、天然乳化剤(例えばアカシア、寒天、アルギン酸、アルギン酸ナトリウム、トラガカント、コンドラックス(chondrux)、コレステロール、キサンタン、ペクチン、ゼラチン、卵黄、カゼイン、ウールファット、コレステロール、ワックス、およびレシチン)、コロイド状粘土(例えばベントナイト[ケイ酸アルミニウム]およびビーガム(登録商標)[ケイ酸アルミニウムマグネシウム])、長鎖アミノ酸誘導体、高分子量アルコール(例えばステアリルアルコール、セチルアルコール、オレイルアルコール、モノステアリン酸トリアセチン、ジステアリン酸エチレングリコール、モノステアリン酸グリセリル、およびモノステアリン酸プロピレングリコール、ポリビニルアルコール)、カルボマー(例えばカルボキシポリメチレン、ポリアクリル酸、アクリル酸ポリマー、およびカルボキシビニルポリマー)、カラギーナン、セルロース誘導体(例えばカルボキシメチルセルロースナトリウム、粉末セルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、メチルセルロース)、ソルビタン脂肪酸エステル(例えばポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート[Tween(登録商標)20]、ポリオキシエチレンソルビタン[Tween(登録商標)60]、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート[Tween(登録商標)80]、ソルビタンモノパルミテート[Span(登録商標)40]、ソルビタンモノステアレート[Span(登録商標)60]、ソルビタントリステアレート[Span(登録商標)65]、グリセリルモノオレエート、ソルビタンモノオレエート[Span(登録商標)80])、ポリオキシエチレンエステル(例えばモノステアリン酸ポリオキシエチレン[Myrj(登録商標)45]、ポリオキシエチレン水添ヒマシ油、ポリエトキシル化ヒマシ油、ステアリン酸ポリオキシメチレン、およびソルトール(登録商標))、スクロース脂肪酸エステル、ポリエチレングリコール脂肪酸エステル(例えばクレモフォア(登録商標))、ポリオキシエチレンエーテル、(例えばポリオキシエチレンラウリルエーテル[Brij(登録商標)30])、ポリビニルピロリドン、モノラウリン酸ジエチレングリコール、オレイン酸トリエタノールアミン、オレイン酸ナトリウム、オレイン酸カリウム、オレイン酸エチル、オレイン酸、ラウリン酸エチル、ラウリル硫酸ナトリウム、プルロニック(登録商標)F68、ポロキサマー(登録商標)188、臭化セトリモニウム、塩化セチルピリジニウム、塩化ベンザルコニウム、ドクサートナトリウムなど、および/またはその組み合わせを包含するが、これに限定されない。
例示的な結合剤は、澱粉(例えばコーンスターチおよび澱粉ペースト)、ゼラチン、糖(例えばスクロース、グルコース、ブドウ糖、デキストリン、モラセス、ラクトース、ラクチトール、マンニトール)、天然および合成ガム(例えばアカシア、アルギン酸ナトリウム、アイリッシュモスエキス、パンワール(panwar)ガム、ガティガム、イサポル(isapol)殻粘液、カルボキシメチルセルロース、メチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、微結晶セルロース、酢酸セルロース、ポリビニルピロリドン)、ケイ酸アルミニウムマグネシウム(ビーガム(登録商標))、およびカラマツアラボガラクタン)、アルギン酸、ポリエチレンオキシド、ポリエチレングリコール、無機カルシウム塩、ケイ酸、ポリメタクリレート、ワックス、水、アルコールなど、およびその組み合わせを包含するが、これに限定されない。
例示的な保存料は、抗酸化剤、キレート剤、抗微生物保存料、抗真菌保存料、アルコール保存料、酸性保存料、および/または他の保存料を包含し得るが、これに限定されない。例示的な抗酸化剤は、アルファトコフェロール、アスコルビン酸、パルミチン酸アコルビル(acorbyl)、ブチル化ヒドロキシアニソール、ブチル化ヒドロキシトルエン、モノチオグリセロール、ピロ亜硫酸カリウム、プロピオン酸、没食子酸プロピル、アスコルビン酸ナトリウム、亜硫酸水素ナトリウム、ピロ亜硫酸ナトリウム、および/または亜硫酸ナトリウムを包含するが、これに限定されない。例示的なキレート剤は、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、クエン酸一水和物、エデト酸二ナトリウム、エデト酸二カリウム、エデト酸、フマル酸、リンゴ酸、リン酸、エデト酸ナトリウム、酒石酸、および/またはエデト酸三ナトリウムを包含する。例示的な抗微生物保存料は、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム、ベンジルアルコール、ブロノポール、セトリミド、塩化セチルピリジニウム、クロルヘキシジン、クロロブタノール、クロロクレゾール、クロロキシレノール、クレゾール、エチルアルコール、グリセリン、ヘキセチジン、イミド尿素、フェノール、フェノキシエタノール、フェニルエチルアルコール、硝酸フェニル水銀、プロピレングリコール、および/またはチメロサールを包含するが、これに限定されない。例示的な抗真菌保存料は、ブチルパラベン、メチルパラベン、エチルパラベン、プロピルパラベン、安息香酸、ヒドロキシ安息香酸、安息香酸カリウム、ソルビン酸カリウム、安息香酸ナトリウム、プロピオン酸ナトリウム、および/またはソルビン酸を包含するが、これに限定されない。例示的なアルコール保存料は、エタノール、ポリエチレングリコール、フェノール、フェノール化合物、ビスフェノール、クロロブタノール、ヒドロキシ安息香酸、および/またはフェニルエチルアルコールを包含するが、これに限定されない。例示的な酸性保存料は、ビタミンA、ビタミンC、ビタミンE、ベータカロテン、クエン酸、酢酸、デヒドロ酢酸、アスコルビン酸、ソルビン酸、および/またはフィチン酸を包含するが、これに限定されない。他の保存料は、トコフェロール、酢酸トコフェロール、デテロオキシム(deteroxime)メシレート、セトリミド、ブチル化ヒドロキシアニソール(BHA)、ブチル化ヒドロキシトルエンド(toluened)(BHT)、エチレンジアミン、ラウリル硫酸ナトリウム(SLS)、ラウリルエーテル硫酸ナトリウム(SLES)、亜硫酸水素ナトリウム、ピロ亜硫酸ナトリウム、亜硫酸カリウム、ピロ亜硫酸カリウム、Glydant Plus(登録商標)、Phenonip(登録商標)、メチルパラベン、Germall(登録商標)115、Germaben(登録商標)II、Neolone(商標)、Kathon(商標)、および/またはEuxyl(登録商標)を包含するが、これに限定されない。
例示的な緩衝剤は、クエン酸緩衝溶液、酢酸緩衝溶液、リン酸緩衝溶液、塩化アンモニウム、炭酸カルシウム、塩化カルシウム、クエン酸カルシウム、グルビオン酸カルシウム、グルコヘプトン酸カルシウム、グルコン酸カルシウム、D-グルコン酸、グリセロリン酸カルシウム、乳酸カルシウム、プロパン酸、レブリン酸カルシウム、ペンタン酸、二塩基性リン酸カルシウム、リン酸、三塩基性リン酸カルシウム、水酸化リン酸カルシウム、酢酸カリウム、塩化カリウム、グルコン酸カリウム、カリウム混合物、二塩基性リン酸カリウム、一塩基性リン酸カリウム、リン酸カリウム混合物、酢酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウム、塩化ナトリウム、クエン酸ナトリウム、乳酸ナトリウム、二塩基性リン酸ナトリウム、一塩基性リン酸ナトリウム、リン酸ナトリウム混合物、トロメタミン、水酸化マグネシウム、水酸化アルミニウム、アルギン酸、無発熱物質水、等張食塩水、リンゲル液、エチルアルコールなど、および/またはその組み合わせを包含するが、これに限定されない。
例示的な滑剤は、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸、シリカ、タルク、麦芽、ベヘン酸(behanate)グリセリル、水添植物油、ポリエチレングリコール、安息香酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、塩化ナトリウム、ロイシン、ラウリル硫酸マグネシウム、ラウリル硫酸ナトリウムなど、およびその組み合わせを包含するが、これに限定されない。
例示的な油は、アーモンド、アンズ核、アボカド、ババス、ベルガモット、クロスグリ種子、ルリジサ、ケード、カモミール、キャノーラ、キャラウェイ、カルナウバ、ヒマシ、シナモン、ココアバター、ココナッツ、タラ肝、コーヒー、トウモロコシ、綿実、エミュー、ユーカリ、月見草、魚、亜麻仁、ゲラニオール、ヒョウタン、葡萄種子、ヘーゼルナッツ、ヒソップ、ミリスチン酸イソプロピル、ホホバ、ククイナッツ、ラバンジン、ラベンダー、レモン、アオモジ、マカデミアナッツ、ゼニアオイ、マンゴー種子、メドウフォーム種子、ミンク、ナツメグ、オリーブ、オレンジ、オレンジラフィー、ヤシ、パーム核、ピーチ核、ピーナッツ、ケシ種子、カボチャ種子、セイヨウアブラナ、米ぬか、ローズマリー、ベニバナ、ビャクダン、サザンカ、キダチハッカ、シーバックソーン、ゴマ、シアバター、シリコーン、大豆、ヒマワリ、ティーツリー、アザミ、椿、ベチバー、クルミ、および小麦胚芽油を包含するが、これに限定されない。例示的な油は、ステアリン酸ブチル、カプリル酸トリグリセリド、カプリン酸トリグリセリド、シクロメチコン、セバシン酸ジエチル、ジメチコン360、ミリスチン酸イソプロピル、ミネラルオイル、オクチルドデカノール、オレイルアルコール、シリコーンオイル、および/またはその組み合わせを含むが、これに限定されない。
経口および非経口投与のための液体剤形は、薬学的に許容可能なエマルション、マイクロエマルション、溶液、懸濁物、シロップ、および/またはエリキシル剤を包含するが、これに限定されない。有効成分に加えて、液体剤形は、当分野において普通に用いられる不活性な希釈剤、例えば水または他の溶媒、可溶化剤および乳化剤、例えばエチルアルコール、イソプロピルアルコール、炭酸エチル、酢酸エチル、ベンジルアルコール、安息香酸ベンジル、プロピレングリコール、1,3-ブチレングリコール、ジメチルホルムアミド、油(特に綿実、落花生、トウモロコシ、胚芽、オリーブ、ヒマシ、およびゴマ油)、グリセロール、テトラヒドロフルフリルアルコール、ポリエチレングリコール、およびソルビタンの脂肪酸エステル、ならびにその混合物などを含み得る。不活性な希釈剤以外に、経口組成物は、アジュバント、例えば湿潤剤、乳化および懸濁剤、甘味料、香料、ならびに/または芳香剤を包含し得る。非経口投与のためのある種の態様において、組成物は、可溶化剤、例えばクレモフォール(登録商標)、アルコール、油、変性油、グリコール、ポリソルベート、シクロデキストリン、ポリマー、および/またはその組み合わせと混合される。
注射用調製物、例えば無菌の注射用の水性または油性懸濁物が、好適な分散剤、湿潤剤、および/または懸濁剤を用いて公知技術に従って処方され得る。無菌の注射用調製物は、無毒な非経口的に受け入れられる希釈剤および/または溶媒中の無菌の注射用溶液、懸濁物、および/またはエマルション、例えば1,3-ブタンジオール中の溶液であり得る。使用され得る受け入れられる基剤および溶媒には、水、リンゲル液(USP)、および等張塩化ナトリウム溶液がある。無菌の不揮発性油は、溶媒または懸濁媒として従来使用されている。この目的のためには、いずれかの無刺激性の不揮発性油が使用され得、合成モノまたはジグリセリドを包含する。オレイン酸などの脂肪酸は注射剤の調製に用いられ得る。
注射用製剤は、例えば細菌リテーナフィルタによる濾過によって、および/または無菌化剤を無菌固体組成物の形態(これは、使用に先立って無菌水または他の無菌の注射用媒体中に溶解または分散され得る)で組み込むことによって、無菌化され得る。
有効成分の効果を長引かせるためには、多くの場合に、皮下または筋内注射からの有効成分の吸収を低速化させることが望ましい。これは、不良な水溶性を有する結晶または非結晶材料の液体懸濁物の使用によって成就され得る。それから、薬物の吸収速度はその溶解速度に依存し、これは翻って結晶サイズおよび結晶形態に依存し得る。その代わりに、非経口投与された薬物形態の遅延した吸収は、薬物を油基剤中に溶解または懸濁することによって成就される。注射用デポ形態は、ポリラクチド-ポリグリコリドなどの生分解ポリマー中の薬物のマイクロ封入マトリックスを形成することによって作られる。ポリマーに対する薬物の比および使用される特定のポリマーの性質に依存して、薬物放出速度がコントロールされ得る。他の生分解ポリマーの例は、ポリ(オルトエステル)およびポリ(酸無水物)を包含する。デポ注射用製剤は、体組織と適合性のリポソームまたはマイクロエマルション中に薬物をトラップすることによって調製される。
直腸または膣内投与のための組成物は典型的には座薬であり、それらは、常温で固体であるが体温では液体であり、そのため直腸または膣腔において融けて有効成分を放出する好適な非刺激性賦形剤(例えば、ココアバター、ポリエチレングリコール、もしくは座薬ワックス)と組成物を混合することによって調製され得る。
経口投与のための固体剤形は、カプセル剤、錠剤、丸薬、粉末、および顆粒剤を包含する。かかる固体剤形において、有効成分は少なくとも1つの不活性な薬学的に許容可能な賦形剤と混合される。それらは例えばクエン酸ナトリウムまたはリン酸二カルシウム、および/あるいは充填剤または増量剤(例えば澱粉、ラクトース、ショ糖、グルコース、マンニトール、およびケイ酸)、結合剤(例えばカルボキシメチルセルロース、アルギン酸、ゼラチン、ポリビニルピロリドン、ショ糖、およびアカシア)、保湿剤(例えばグリセロール)、崩壊剤(例えば寒天、炭酸カルシウム、馬鈴薯もしくはタピオカ澱粉、アルギン酸、ある種のケイ酸塩、および炭酸ナトリウム)、溶解遅延剤(例えばパラフィン)、吸収促進剤(例えば第4級アンモニウム化合物)、湿潤剤(例えばセチルアルコールおよびモノステアリン酸グリセロール)、吸着剤(例えばカオリンおよびベントナイト粘土)、および滑剤(例えばタルク、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、固体ポリエチレングリコール、ラウリル硫酸ナトリウム)、およびその混合物である。カプセル剤、錠剤、および丸薬の場合では、剤形は緩衝剤を含み得る。
類似の型の固体組成物が、ソフトおよびハードの充填ゼラチンカプセル剤の充填剤として使用され得、ラクトースまたは乳糖、さらには高分子量ポリエチレングリコールおよび同類などの賦形剤を用いる。錠剤、糖衣剤、カプセル剤、丸薬、および顆粒剤の固体剤形は、コーティングおよびシェル(例えば腸溶コーティングおよび医薬処方分野において周知の他のコーティング)によって調製され得る。それらは任意で乳白剤を含み得、有効成分(単数または複数)を、腸管のある部位においてのみまたはそこにおいて優先的に、任意で遅延型様式で放出する組成物であり得る。用いられ得る包埋組成物の例は、ポリマー物質およびワックスを包含する。類似の型の固体組成物が、ソフトおよびハードの充填ゼラチンカプセル剤の充填剤として使用され得、ラクトースまたは乳糖、さらには高分子量ポリエチレングリコールおよび同類などの賦形剤を用いる。
組成物の局所および/または経皮投与のための剤形は、軟膏、ペースト剤、クリーム、ローション、ゲル、粉末、溶液、スプレー、吸入剤、および/またはパッチを包含し得る。一般的に、有効成分は、無菌条件において、薬学的に許容可能な賦形剤および/またはいずれかの必要とされる保存料および/または緩衝液と、要求され得る通り混合される。加えて、本発明は経皮パッチの使用を考え、これは多くの場合に、体への化合物のコントロールされた送達を提供するという追加の利点を有する。かかる剤形は、例えば化合物を適当な媒体中に溶解および/または調合することによって調製され得る。その代わりにまたは加えて、速度は、速度コントロール膜を提供することによってならびに/または化合物をポリマーマトリックスおよび/もしくはゲル中に分散することによってのいずれかでコントロールされ得る。
本明細書に記載される皮内医薬組成物を送達することへの使用のための好適なデバイスは、短針デバイスを包含する。皮内組成物は、皮膚中への針の有効挿入長を限定するデバイス、およびその機能上の均等物によって投与され得る。液体噴射注射器によっておよび/または角質層を貫いて真皮に達する噴射を生成する針によって、液体組成物を真皮に送達する噴射注射デバイスが好適である。圧縮ガスを用いて粉末形態のワクチンを加速させ、皮膚の外層を通して真皮に至らせるバリスティックな粉末/粒子送達デバイスが好適である。その代わりにまたは加えて、従来のシリンジが皮内投与の古典的なマントゥー法で用いられ得る。
局所投与に好適な製剤は、液体および/または半液体調製物、例えばリニメント剤、ローション、水中油および/または油中水エマルション、例えばクリーム、軟膏、および/またはペースト剤、および/または溶液および/または懸濁物を包含するが、これに限定されない。局所投与可能な製剤は例えば約1%~約10%(w/w)の有効成分を含み得るが、有効成分の濃度は溶媒中への有効成分の可溶性限度まで高くあり得る。局所投与のための製剤は、本明細書に記載される追加の成分の1つまたは2つ以上をさらに含み得る。
医薬組成物は、口腔からの経肺投与に好適な製剤として調製、パッケージング、および/または販売され得る。かかる製剤は、有効成分を含みかつ約0.5nm~約7nmまたは約1nm~約6nmの範囲の直径を有する乾燥粒子を含み得る。かかる組成物は、便宜的に、乾燥粉末レザーバ(これには噴射剤流が導かれて粉末を分散し得る)を含むデバイスを用いるおよび/または自己噴射性溶媒/粉末ディスペンサー容器(例えば、密封容器中の低沸点噴射剤中に溶解および/または懸濁された有効成分を含むデバイス)を用いる投与のための乾燥粉末の形態である。かかる粉末は、重量による粒子の少なくとも98%が0.5ナノメートルよりも大きい直径を有し、数による粒子の少なくとも95%が7ナノメートルよりも小さい直径を有する粒子を含む。その代わりに、重量による粒子の少なくとも95%が1ナノメートルよりも大きい直径を有し、数による粒子の少なくとも90%が6ナノメートルよりも小さい直径を有する。乾燥粉末組成物は糖などの固体微粉末希釈剤を含み得、便宜的に単位用量形態で提供される。
低沸点噴射剤は、一般的に、大気圧において華氏65度未満の沸点を有する液体噴射剤を包含する。一般的に、噴射剤は組成物の50~99.9%(w/w)を構成し得、有効成分は組成物の0.1~20%(w/w)を構成し得る。噴射剤は、追加の成分、例えば液体非イオン性および/もしくは固体アニオン性界面活性剤ならびに/または固体希釈剤(これは、有効成分を含む粒子と同じオーダーの粒径を有し得る)をさらに含み得る。
経肺送達のために処方される医薬組成物は、溶液および/または懸濁物の液滴の形態の有効成分を提供し得る。かかる製剤は、有効成分を含む任意で無菌の水性および/または希アルコール性溶液および/または懸濁物として調製、パッケージング、および/または販売され得、便宜的にいずれかのネブライゼーションおよび/または霧化デバイスを用いて投与され得る。かかる製剤は1つまたは2つ以上の追加の成分(香料、例えばサッカリンナトリウム、揮発油、緩衝剤、界面活性剤、および/または保存料、例えばメチルヒドロキシ安息香酸を包含するが、それらに限定されない)をさらに含み得る。この投与経路によって提供される液滴は、約0.1nm~約200nmの範囲の平均直径を有し得る。
経肺送達に有用であるとして本明細書に記載される製剤は、医薬組成物の鼻腔内送達に有用である。鼻腔内投与に好適な別の製剤は、有効成分を含みかつ約0.2μm~500μmの平均粒子を有する粗粒粉末である。かかる製剤は、かぎタバコが吸われる様式で(すなわち、鼻孔に近接して支えられた粉末の容器からの鼻腔による急速な吸入によって)投与される。
鼻腔投与に好適な製剤は、例えば、有効成分の少なくは約0.1%(w/w)~多くは100%(w/w)を含み得、本明細書に記載される追加の成分の1つまたは2つ以上を含み得る。医薬組成物は、口腔内投与に好適な製剤として調製、パッケージング、および/または販売され得る。かかる製剤は、例えば、従来の方法を用いて作られる錠剤および/またはロゼンジの形態であり得、例えば0.1%~20%(w/w)の有効成分を含み得、残部は、経口的に溶解可能および/または分解可能な組成物と任意で本明細書に記載される追加の成分の1つまたは2つ以上とを含む。その代わりに、口腔内投与に好適な製剤は、有効成分を含む粉末ならびに/またはエアロゾル化および/もしくは霧化溶液および/もしくは懸濁物を含み得る。かかる粉末化、エアロゾル化および/またはエアロゾル化製剤は、分散されたときに約0.1nm~約200nmの範囲の平均粒径および/または液滴サイズを有し得、本明細書に記載されるいずれかの追加の成分の1つまたは2つ以上をさらに含み得る。
医薬組成物は、眼投与に好適な製剤として調製、パッケージング、および/または販売され得る。かかる製剤は、例えば点眼薬の形態であり得、例えば水性または油性液体賦形剤中の有効成分の0.1/1.0%(w/w)溶液および/または懸濁物を包含する。かかる点薬は、緩衝剤、塩、および/または本明細書に記載されるいずれかの追加の成分の1つもしくは2つ以上の他のものをさらに含み得る。有用である他の眼投与可能な製剤は、有効成分を微結晶形態でおよび/またはリポソーム調製物中に含むものを包含する。点耳薬および/または点眼薬は本発明の範囲内であると考えられる。
医薬剤の製剤および/または製造における一般的な考慮事項は、例えばRemington: The Science and Practice of Pharmacy 21st ed., Lippincott Williams & Wilkins, 2005(参照によって本明細書に組み込まれる)に見いだされる。
投与
本発明は、その必要がある対象に、機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質の組成物を投与することを含む方法を提供する。いくつかの態様において、他の機能的なエフェクター蛋白質(例えばCas9蛋白質)とカチオン性脂質および/またはカチオン性ポリマーとを含む組成物を投与する方法が提供される。かかる組成物は、疾患、障害、および/または状態を予防、処置、診断、またはイメージングすることに有効ないずれかの量およびいずれかの投与経路を用いて対象に投与され得る。要求される正確な量は、対象の種、年齢、および一般的な状態、疾患の重さ、特定の組成物、その投与モード、その活性モード、ならびに同類に依存して対象毎に変わるであろう。本発明に従う組成物は、投与の容易さおよび用量の統一性のために単位剤形で典型的には処方される。しかしながら、本発明の組成物の合計の一日使用量が、正当な医学的判断の範囲内で担当医によって決められるであろうということは理解されるであろう。いずれかの特定の患者についての特定の治療有効、予防有効、または適切なイメージング用量レベルは種々の因子に依存するであろう。それらは、治療されようとする障害および障害の重さ、使用される特定の化合物の活性、使用される特定の組成物、患者の年齢、体重、一般的な健康、性、および食事、投与の時間、投与経路、および使用される特定の化合物の排泄速度、処置の長さ、使用される特定の化合物との組み合わせでまたは同時的に用いられる薬物、ならびに医学分野において周知の同類の因子を包含する。
送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質の組成物、さらには例えばCas9蛋白質とカチオン性脂質とを含む組成物は、いずれかの経路によって投与され得る。いくつかの態様において、かかる組成物は種々の経路(経口、静脈内、筋内、動脈内、脊髄内、髄腔内、皮下、脳室内、経皮、皮内、直腸、膣内、腹腔内、局所(例えば、粉末、軟膏、クリーム、ゲル、ローション、および/または点薬による)、粘膜、鼻腔、口腔、経腸、硝子体、腫瘍内、舌下の、気管内点滴、気管支内点滴、および/もしくは吸入によっての、経口スプレー、鼻腔スプレー、および/またはエアロゾルとしての、ならびに/または門脈カテーテルを通しての、を包含する)の1つまたは2つ以上によって投与される。いくつかの態様において、超荷電蛋白質もしくは複合体、および/またはその医薬、予防、診断、またはイメージング組成物は、全身静注によって投与される。特定の態様において、超荷電蛋白質もしくは複合体および/またはその医薬、予防、診断、またはイメージング組成物は、静脈内および/または経口投与され得る。特定の態様において、かかる組成物は、機能的なエフェクター蛋白質が血流脳関門、血管バリア、または他の上皮バリアを横断することを可能とする方法で投与され得る。
ある種の態様において、本発明に従う組成物は、望まれる治療、診断、予防、またはイメージング効果を得るために、1日1回または2回以上、約0.0001mg/kg~約100mg/kg、約0.01mg/kg~約50mg/kg、約0.1mg/kg~約40mg/kg、約0.5mg/kg~約30mg/kg、約0.01mg/kg~約10mg/kg、約0.1mg/kg~約10mg/kg、または約1mg/kg~約25mg/kg対象体重(1日あたり)の機能的なエフェクター蛋白質の量を送達するために充分な用量レベルで投与され得る。望まれる用量は、1日3回、1日2回、1日1回、2日毎、3日毎、毎週、2週毎、3週毎、または4週毎に送達され得る。ある種の態様において、望まれる用量は複数回の投与(例えば2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、または15回以上の投与)を用いて送達され得る。
機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む組成物は、1つまたは2つ以上の他の治療、予防、診断、またはイメージング剤との組み合わせで投与され得る。「との組み合わせで」によって、薬剤が同時に投与および/または一緒に送達のために処方されなければならないとなることは意図されていないが、送達のそれらの方法は本発明の範囲内である。組成物は、1つまたは2つ以上の他の望まれる治療薬または手術と並行して、それに先立って、またはそのその後に投与され得る。一般的に、各薬剤は、その薬剤について決定された用量および/またはタイムスケジュールで投与されるであろう。いくつかの態様において、本発明は、それらのバイオアベイラビリティを改善、それらの代謝を低減および/もしくは改変、それらの排泄を阻害、ならびに/またはそれらの体内分布を改変し得る薬剤との組み合わせでの、医薬、予防、診断、またはイメージング組成物の送達を包含する。
キット
本発明は、本発明の方法を便利におよび/または有効に実行するための種々のキットを提供する。典型的には、キットは構成物の充分な量および/または数を含んで、ユーザが対象(単数または複数)の複数の処置を実施することおよび/または複数の実験を実施することを可能とするであろう。いくつかの態様において、キットは、(i)本明細書に記載される超荷電蛋白質、(ii)送達されるべき機能的なエフェクター蛋白質、(ii)カチオン性脂質および/もしくはカチオン性ポリマー、ならびに(iv)超荷電蛋白質と結びついた機能的な蛋白質を含む組成物を処方するための取扱説明書の1つまたは2つ以上を含む。いくつかの態様において、キットはCas9蛋白質とカチオン性脂質とを含む。いくつかの態様において、キットは、超荷電蛋白質および/または送達されるべき機能的な蛋白質をコードする核酸を含む。いくつかの態様において、キットは、超荷電蛋白質とクローニング部位(融合蛋白質を生成するために、機能的なエフェクター蛋白質のインフレームクローニングを可能とする)とをコードするクローニングベクターを含む。いくつかの態様において、キットは、機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む本明細書において提供される医薬組成物と、対象への医薬組成物の投与のためのシリンジ、針、またはアプリケータと、対象への医薬組成物の投与のための取扱説明書とを含む。
本発明のこれらおよび他の側面は、以下の例の考慮によってさらに認められるであろう。それらは本発明のある種の特定の態様を例証することを意図されているが、請求項によって定義されるその範囲を限定することは意図されていない。
例1:超荷電GFPに融合したTALE活性化因子の送達
褐色または白色脂肪細胞の細胞運命に向けて線維芽細胞の細胞運命をリプログラミングするための主要なターゲットは、白色脂肪組織(WAT)から褐色脂肪組織(BAT)への切り換えに在り、これはPRDM16およびPPARγの発現によって支配されている。線維芽細胞内のPPARγおよびPRDM16ゲノム配列をターゲット化する、+36GFPに融合した堅牢なTALE転写活性化因子を操作した。融合蛋白質は、ヘパリンカラムおよび/またはSECを用いて精製した。ゲルは130kDに単一バンドを示している。TALE活性化因子の送達後の発現の調節と細胞表現型に及ぼす効果とを、脂肪生成カクテルによる7日間の処置が続いたPPARγのcDNAのウイルス送達後の調節と比較した。脂肪細胞が、+36GFP-TALE-PRDM16融合体による処置によって形成したということが観察された。白色脂肪組織マーカー遺伝子の発現を、超荷電PRDM16-TALE活性化因子の送達後に検出した。
PPARγに対するTALE活性化因子の一度きりの超荷電蛋白質によって媒介される送達は、白色脂肪遺伝子の発現を誘導し、線維芽細胞を白色脂肪細胞に分化させるということが見いだされた。PPARγおよびPRDM16-TALE活性化因子両方の超荷電蛋白質によって媒介される送達は、脂肪細胞の分化を誘導し、褐色脂肪マーカー(例えばPRDM16、cox8b、elov13、およびcidea)の増大した発現、さらには熱産生遺伝子発現マーカーPGC1aおよびUCP1の小さい増大があった。
Aureinペプチドを+36GFP-TALE活性化因子融合蛋白質のN末端に融合した。ヘパリンカラムによって精製されたAurein-+36GFP-TALEの送達を、処置された細胞の核内の蛍光を検出することによって観察した。
図1は哺乳類細胞内への高分子送達の模式図を示している。図2は、白色脂肪組織(WAT)から褐色脂肪組織(BAT)への切り換えの模式図を示している。図3は、PPARγまたはPRDM16をターゲット化するようにプログラミングされたTALE活性化因子を送達するための超荷電送達プラットフォームの模式図である。図4は、+36GFP融合体、18.5merのTALEドメイン、およびVP64活性化ドメインを含む融合蛋白質の模式図を示している。図5は、+36GFP-TALE活性化因子融合蛋白質の発現および精製を示している。図6は、+36GFP-PPARγおよびPRDM16-TALE活性化因子融合蛋白質の送達による脂肪細胞制御因子遺伝子の活性化についての試験アッセイを示している。
図7は、異なる濃度での+36GFP-TALE活性化因子融合蛋白質の送達有効性を示している。図8は、NIH-3T3細胞における2つの異なる+36GFP-PRDM16-TALE融合蛋白質の送達有効性の比較を示している。図9は、PPARγ-TALE活性化因子融合体の送達後のPPARγ遺伝子発現と様々なコントロールに対する比較とを示している。図10は、RDM16-TALE活性化因子融合体の送達後のPRDM16遺伝子発現と様々なコントロールに対する比較とを示している。図11は、血清の存在下で観察された中程度のTALE活性を示している。
図12は、脂肪生成カクテルによる7日間の処置が続くPPARγのウイルス送達の検証を示している。図13は、線維芽細胞をプログラミングしてWATおよびBATにするためのアッセイの模式図を示している。図14は、+36GFP-TALE活性化因子融合蛋白質による処置によって観察された脂肪細胞形成を示している。図15は、LipidTOX redによる7日後の様々な処置の染色を示しており、ウイルス送達後、さらには超荷電PPARγ-TALE活性化因子融合蛋白質の送達後の脂肪細胞の形成を実証している。図16は、LipidTOX redによる7日後の様々な処置後の細胞の染色を示しており、ウイルス送達後、さらには超荷電PPARγ-TALE活性化因子融合蛋白質の送達後の脂肪細胞の形成を実証している。図17は、ウイルス送達後、さらには超荷電PPARγ-TALE活性化因子融合蛋白質の送達後のWATバイオマーカー遺伝子の発現を示している。
例2:超荷電GFPに融合したTALE活性化因子のインビボ送達
NIH-3T3細胞を70~90%コンフルエンスまで育て、血清無しで、DMEM中の+36GFP-PPARγ-TALEおよび/または+36GFP-PRDM16-TALE融合蛋白質の1μMまたは0.5~5μMによって処置した。無血清培地は、血清が蛋白質に基づく送達の有効さを減少させ得るので選んだ。細胞を、それぞれの融合蛋白質溶液と一緒に4時間インキュベーションした後、培地を取り除き、血清を含有する完全DMEMを細胞に追加しなおした。コントロール細胞は、公知のプロトコールに従って、WATおよびBAT遺伝子の発現についての正のコントロールとして働くためにPPARγまたはPRDM16をコードするウイルス構築物に感染させた(例えば、Seale et al. 2008 Nature 454, 961-967参照。その全内容は参照によって本明細書に組み込まれる)。一度全ての細胞が100%コンフルエンスに達したら、イソブチルメチルキサンチン、インスリン、ロシグリタゾン、デキサメトゾン(dexamethosone)、T3、およびインドメタシンを含有する脂肪生成カクテルを細胞に追加し、48時間後に、インスリン、T3、およびロシグリタゾンのみを含有するカクテルの形態と取り替えた。カクテルのこの第2の取り替え後の48時間目に、T3、インスリン、およびロシグリタゾンの別の用量を細胞に追加した。翌日(これは、実験の開始からここで1週間である)、細胞をTRIzolによって集め、全RNAを抽出し、qRT-PCRを実施して、PPARγ、PRDM16、および他の褐色脂肪マーカー遺伝子(例えば、UCP1、PGC1a、Elov13、およびCidea)の遺伝子発現レベルを測定した。
図18は、インビボで褐色脂肪の脂肪細胞を誘導するための超荷電PRDM16-TALE活性化因子融合蛋白質の送達を示している。堅牢な脂肪細胞形成が、PPARγおよびPRDM16のウイルス送達後、かつ超荷電TALE活性化因子蛋白質融合体の送達後にもまた観察された。図19は、細胞へのPPARγおよびPRDM16の超荷電(TALE)およびウイルス送達の比較を示している。図は、PPARγおよびPRDM16の発現による褐色脂肪マーカーのTALE/TALE、ウイルス/TALE、およびウイルス/ウイルスによって誘導された発現を示している。図20は、脂肪細胞分化と一致したRT-qPCR評価を示しており、これはLipidTOX染色によってもまた観察された。
例3:超荷電GFPと複合体化したTALE活性化因子の送達
送達有効性を改善するために、機能的な蛋白質が超荷電蛋白質と非共有結合的に結びついた蛋白質複合体を生成して、細胞に投与した。図21は、+36GFPとの複合体としての機能的なTALE活性化因子融合蛋白質の送達が、送達後のTALE活性化因子活性を改善するということを示している。図22は、融合体(+36GFP-PRDM16-TALE-3)または+36GFPとの複合体(+36GFP+PRDM16-TALE-3)いずれかとしてのTALE活性化因子融合体送達後の、PRDM16遺伝子発現を示している。複合体の送達がTALE活性化因子活性を増大させる傾向があったということが観察された。
例4:送達有効性にAurein融合が及ぼす効果
図23は、TALE活性化因子融合体送達(+36GFPとの融合体または複合体いずれかとして)後のPRDM16遺伝子発現に及ぼす、+36GFPへのN末端Aureinペプチド融合の効果を示している。Aureinペプチドを、GGS(9)(配列番号252)リンカーを介してGFP-TALE構築物のN末端に融合して、Aureinペプチド-GGS(9)リンカー-(+)36GFP蛋白質-GGS(9)リンカー-PRDM16-TALE-3融合蛋白質をもたらした。蛋白質はサイズ排除クロマトグラフィーを用いて精製した。
例5:超荷電GFPまたはカチオン性脂質と複合体化したTALE活性化因子の送達
図24は、+36GFPとの融合体(+36GFP-PRDM16-TALE-3)、+36GFPとの複合体(+36GFP+PRDM16-TALE-3)、またはLipofectamine LTXとの複合体いずれかとしてのTALE-PRDM16活性化因子蛋白質送達後のPRDM16遺伝子発現を示しており、それらでは遺伝子発現の増大が観察された。
例6:超荷電GFPに融合したCas9の送達
哺乳類細胞内へのCas9の超荷電送達は、先行の送達法の欠点を有さない、細胞への強力なRNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼ技術の応用を可能とするであろう。この目標のために、ALALリンカーを用いて+36GFPとのCas9融合体を生成した。図25は、Cas9との超荷電融合蛋白質の模式図を示している。図26は、野生型Cas9蛋白質ならびに+36GFPおよびAurein-GGS9とのCas9融合蛋白質の精製を示している。融合蛋白質は、上のTALE活性化因子融合蛋白質と同じ様式で細胞に投与される。Cas9は、一度細胞に送達されたら、細胞内ゲノム中のそのターゲット部位に結合して切断する。ターゲット細胞内のヌクレアーゼ活性は好適なアッセイによって(例えば、サザンブロットまたはシーケンシングアッセイによって)検出される。
例7:インビトロおよびインビボにおけるゲノム編集蛋白質の効率的な送達
核または細胞質への蛋白質の効率的な細胞内送達は、ゲノム編集薬剤を包含する蛋白質治療薬の可能性を完全に現実化するために必要とされる。蛋白質送達の現行の方法は、血清蛋白質に対する低い忍容性、不良なエンドソーム脱出、および限定されたインビボ有効性を多くの場合に被る。この例において実証されている通り、核酸トランスフェクションのために元々は開発された普通のカチオン性脂質試薬が、負の超荷電蛋白質に融合した、天然アニオン性ドメインを含有する、またはアニオン性核酸に自然に結合する蛋白質を強力に送達し得る。この手法は、10%血清を含有する培地中において、低いナノモル濃度で、培養ヒト細胞内へのCreリコンビナーゼ、TALEおよびCas9に基づく転写活性化因子、およびCas9:sgRNAヌクレアーゼ複合体の機能的な送達を媒介する。脂質に基づく送達は、カチオン性蛋白質送達戦略よりも>1,000倍強力であり得る。Cas9:sgRNA複合体の送達は、標準的なDNAトランスフェクションと比較して実質的に高い特異性で、80%ほども高いゲノム改変効率をもたらした。これは、送達されるCas9:sgRNA複合体の一過的な性質が原因である可能性が高い。この手法は、インビボのマウス内耳へのCreリコンビナーゼおよびCas9:sgRNA複合体の効率的な送達をもまた媒介し、90%までのCreによって媒介される組み換えおよび20%までのCas9によって媒介されるゲノム改変を、ターゲット化された有毛細胞集団において達成した。
材料および方法
Cas9、Cre、およびTALE融合体およびsgRNA発現プラスミドの構築
本稿に用いた全ての構築物の配列は下に列挙されているか、または明細書の他所で提供される。全ての蛋白質構築物は、pET29a発現プラスミドにクローニングされた興味ある蛋白質の以前に報告されたプラスミドから生成した。
S.pyogenesのCas9および他の蛋白質の発現および精製
E.coliのBL21 STAR(DE3)コンピテントセル(Life Technologies)を、N末端10×Hisタグ/マルトース結合蛋白質に融合されたS.pyogenesのCas9をコードするpMJ80647によって形質転換した。もたらされた発現株は、アンピシリンの100μg/mLを含有するルリア・ベルターニ(LB)ブロスに37℃で一晩接種した。細胞を同じ増殖培地中に1:100希釈し、OD600=約0.6まで37℃で育てた。培養物を20℃で30minインキュベーションし、イソプロピル-β-D-1-チオガラクトピラノシド(IPTG)を0.5mMで追加してCas9発現を誘導した。およそ16時間後に、細胞を8,000gでの遠心分離によって回収し、溶解緩衝液(50mMトリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(Tris)-HCl(pH8.0)、1MのNaCl、20%グリセロール、10mMトリス(2-カルボキシエチル)ホスフィン(TCEP))中に再懸濁した。細胞をソニケーション(6W出力で合計15分間の1secパルスオン、1secパルスオフ)によって溶解し、可溶性ライセートを30分間の20,000gでの遠心分離によって得た。
細胞ライセートをHisPurニッケル-ニトリロ酢酸(ニッケルNTA)樹脂(Thermo Scientific)と一緒に4℃で30分間インキュベーションして、HisタグCas9を捕捉した。樹脂を20mLカラムに移し、溶解緩衝液の20カラム体積によって洗浄した。Cas9を50mMのTris-HCl(pH8)、0.1MのNaCl、20%グリセロール、10mMのTCEP、および300mMイミダゾール中に溶出し、Amiconウルトラ遠心分離フィルター(Millipore,100kDa分子量カットオフ)によって約50mg/mLまで濃縮した。6×Hisタグおよびマルトース結合蛋白質を、20時間の4℃でのTEVプロテアーゼ処置によって取り除き、第2のNiアフィニティー精製ステップによって捕捉した。Cas9を含有する溶離液を、50mMのTris-HCl(pH8)、0.1MのNaCl、20%グリセロール、および10mMのTCEPを含有する精製緩衝液中でHiTrap SP HPカラム(GE Healthcare)に注入した。Cas9を、5カラム体積に0.1Mから1MのリニアなNaCl勾配を含有する精製緩衝液によって溶出した。Cas9を含有する溶出画分を200μMの濃度まで濃縮した。これはビシンコニン酸アッセイ(BCA)(Pierce Biotechnology)によって定量した。液体窒素中で瞬間凍結し、-80℃のアリコートで貯蔵した。全ての他の蛋白質は、TEV切断ステップ無しのこの方法によって精製した。(-30)GFPを含有する蛋白質は、同じ精製プロトコールを用いて、Hi-Trap Q HPアニオン交換カラム(GE Healthcare)を用いるアニオン交換によって精製した。
sgRNAのインビトロ転写
20bpのsgRNAターゲット配列が続くT7プロモーター結合部位を含有するリニアなDNA断片を、製造者の取扱説明書に従ってT7 High Yield RNA Synthesisキット(NEB)を用いてインビトロ転写した。インビトロ転写されたRNAをエタノールによって沈殿し、Criterion10%ポリアクリルアミドTBE-尿素ゲル(Bio-Rad)上でのゲル電気泳動によって精製した。切り出したゲル断片は、4℃で振盪表面上で一晩、300mMのNaClの420μL中で抽出した。ゲル精製されたsgRNAをエタノールによって沈殿し、水中に再溶解し、sgRNA濃度を最終的にUV吸光度によって定量して、-80℃で瞬間凍結した。
プラスミドトランスフェクション
プラスミドDNAを、製造者のプロトコールに従ってLipofectamine 2000(Life Technologies)を用いてトランスフェクションした。TALE活性化因子プラスミドについては、DNAの300ngをトランスフェクションした。活性化因子相乗作用実験のためには、5つのプラスミドのそれぞれの60ngをプールしてトランスフェクションした。Cas9ヌクレアーゼ送達実験のためには、CLTA、EMX、VEGF、およびGFP中のゲノム部位をターゲット化するsgRNA(ニッカーゼ研究のためには、sgRNAのGFPg1、GFPg3、GFPg5、およびGFPg7)を発現するリニアなDNAのPCR産物を、トランスフェクション実験に用いた。リニアなDNAのPCR産物は、鋳型としてのU6プロモーターを含有するプラスミド、ならびにフォワードプライマー(U6プロモーター上流配列を負う)およびリバースプライマー(sgRNA配列(各ターゲットにユニークな20bp配列+定常なsgRNAバックボーン構造配列)が続くU6下流配列を含有する)を用いて生成した。リニアなDNA鋳型から発現されたsgRNAは、T7転写のためにそれらの塩基を要求したインビトロ転写されるsgRNAにマッチングする少なくとも2つの5’グアノシンを含有した。プライマー配列およびPCR条件は下に列挙されている。dCas9活性化因子実験のためには、Cas9またはdCas9-VP64プラスミドDNAの700ngを、適切なsgRNA発現プラスミドの250ngと一緒にコトランスフェクションした。活性化因子相乗作用実験のためには、6つのsgRNAのそれぞれからのDNAの50ngをプールし、dCas9-VP64プラスミドの700ngと一緒にコトランスフェクションした。
細胞培養におけるカチオン性脂質と複合体化した転写因子蛋白質の送達
インビトロおよびインビボ両方のゲノム編集蛋白質の送達のより深い記載が、下に見いだされる。簡潔には、培養細胞を、翌日約70%コンフルエンスに達するために必要な細胞密度で、10%FBS(「完全血清培地」)および抗生物質を有するダルベッコの改変イーグル培地+GlutaMAX(Life Technologies,Carlsbad,CA)中で48ウェルフォーマット(250μL体積)にプレーティングした。完全血清培地を、送達の1時間前に、抗生物質を含有しないが同じ培地と取り替えた。CreおよびTALE蛋白質の送達は、正常なプラスミドトランスフェクションのための製造者のプロトコール(インキュベーション時間を包含する)に従って、25μLのOPTIMEM培地(Life Technologies,Carlsbad,CA)中で市販のカチオン性脂質の0.5~1.5μLと1nM~1μMの蛋白質を組み合わせることによって実施した(275μLの終体積中)。インビトロのCas9送達のためには、転写されたsgRNAをCas9蛋白質と一緒に5minインキュベーションした後にカチオン性脂質試薬と複合体化した。OPTIMEM培地中の25μLの脂質複合体を細胞に追加し、別様に注意しない限り、培地を12~16時間後に新鮮な培地に取り替えた。細胞は、送達の48時間後に組み換えについて、送達の4または16時間後いずれかに遺伝子活性化について、送達の72時間後に遺伝子改変についてアッセイされた。
ゲノム改変を検出するためのT7エンドヌクレアーゼIアッセイ
U2OS-EGFP細胞またはHEK293T細胞を、Cas9発現およびsgRNA発現プラスミドもしくはリニアなDNAのPCR産物(上で記載されている通り)によってトランスフェクションするか、またはCas9蛋白質のみ、インビトロ転写されたsgRNAのみ、もしくはRNAiMAXのみによって処置した。ゲノムDNAを、製造者の取扱説明書に従ってDNAdvanceキット(Agencourt)を用いて、トランスフェクションの2日後に細胞から単離した。ゲノムDNAの200ngを鋳型としてPCR反応に用いて、下で規定されるフランキングサーベイ(survey)プライマー対によって、ターゲット化されたゲノム遺伝子座を増幅した。PCR産物をQIAquick PCR精製キット(Qiagen)によって精製し、Quant-iT(商標)PicoGreen(登録商標)dsDNAキット(Life Technologies)によって定量した。精製されたPCRのDNAの250ngをNEBuffer 2(NEB)の2μLと組み合わせて19μLの合計体積にし、95℃で5分間、95から85℃まで2℃/s、85から20℃まで0.2℃/sでのサーモサイクルによって変性して、それからリアニーリングした。リアニーリングしたDNAを、T7エンドヌクレアーゼI(10U/μL,NEB)の1μLと一緒に37℃で15分間インキュベーションした。50%グリセロールの10μLをT7エンドヌクレアーゼ反応に追加し、12μLを5%TBEの18ウェルCriterionPAGEゲル(Bio-Rad)上で分析した(200Vで30分間電気泳動、それから1×SYBR Gold(Life Technologies)によって30min染色)。Cas9によって誘導された切断バンドおよび未切断バンドをAlphaImager HP(Alpha Innotech)によって可視化し、ImageJソフトウェアを用いて定量した54。切断されたバンドのピーク強度を全てのバンドの合計強度(未切断+切断されたバンド)によって割って、切断された画分を決定し、これを用いて、以前に記載された通りに遺伝子改変レベルを見積もった46。各サンプルについて、トランスフェクションおよびその後の改変測定は異なる日に三重(triplicate)で実施した。
幹細胞培養および送達
永久的なGFP遺伝子挿入を含有するマウス胚性幹細胞(ES)株Tau-GFPを、DMEM中で、15%FBS(Gibco)、100mMのMEM非必須アミノ酸(Gibco)、0.55mMの2-メルカプトエタノール、および白血病阻止因子(1,000単位/ml,Chemicon)と一緒に培養した。5日後に、GFP蛍光を示す浮遊スフィアが形成された。Cas9:sgRNAおよびRNAiMAXの複合体を、浮遊スフィアを含有する培養物に16時間追加した。Cas9:sgRNA処置後に、細胞を上の培地中で3日間培養した。浮遊スフィアを5分間トリプシンで処置し、それから70μmフィルターに通してシングルセルを回収した。細胞は、ラミニンコートスライド上で、1×Ν2、1×B27、ペニシリン-ストレプトマイシン(100μg/mL)、および10%FBSを補ったDMEM/F12(1:1)中で、標識前に2日間培養した。免疫組織化学を抗GFP抗体(#ab13970,Abcam)を用いて実施し、GFP発現を評価した。GFP陰性細胞の数を定量するために、本発明者は20×倍率で3つの代表的な視野からのGFP陽性およびGFP陰性細胞の合計数をカウントし、平均効率を計算した。3つの独立した実験を各条件について実施した。
マウス内耳への蛋白質のマイクロインジェクション
P0のfloxP-tdTomatoマウスを(-30)GFP-Cre注射に用い、P2のAtoh1-GFPマウスをCas9:sgRNA注射に用いた。動物は、Massachusetts Eye & Ear Infirmary ALCUC committeeによって認可されたプロトコール下で用いた。マウスは、氷上でそれらの温度を下げることによって麻酔した。開窓(cochleostomy)は、耳介の後ろで切開して耳骨胞を暴露することによって実施した。マイクロマニピュレータによって支えられたガラスマイクロピペットを、中央階に複合体を送達するために用いた(これは内耳有毛細胞へのアクセスを可能とする)。(-30)GFP-Creの送達のためには、45μM蛋白質の3μLをRNAiMAXまたはLipofectamine 2000いずれかの3μLと混合し、注射に先立って30分間室温でインキュベーションした。4匹のマウスを、処置群あたり注射した。Cas9:sgRNA複合体の送達のためには、200μMのCas9蛋白質の1μLを100μMのsgRNAの2μLと混合し、室温で5分間インキュベーションした後、RNAiMAXまたはLipofectamine 2000いずれかの3μLを混合し、注射に先立って追加の30分間インキュベーションした。3匹のマウスが処置群あたり注射された。各注射の合計の送達体積は蝸牛あたり0.3μLであり、放出は32nL/secの速度でマイクロマニピュレータによってコントロールした。
免疫組織化学および定量
注射の5~10日後に、マウスを屠殺し、蝸牛を標準的なプロトコールによって集めた55。免疫組織化学のためには、有毛細胞マーカー(Myo7aおよびEsp)および支持細胞(Sox2)に対する抗体を、以前に記載されたプロトコールに従って用いた55。(-30)GFP-Cre後のtdTomato陽性細胞またはCas9:sgRNA送達後のGFP陰性細胞の数を定量するために、本発明者は、蝸牛の基部渦巻きの注射部位周囲の200μmに及ぶ領域内の外有毛細胞の合計数をカウントした。(-30)GFP-Creによって誘導される組み換えまたはCas9:sgRNAによって誘導されるゲノム改変の効率を、tdTomatoを発現するまたはGFP発現を喪失した外有毛細胞のパーセンテージとして計算した。
ゲノム改変のハイスループットDNAシーケンシング
HEK293T細胞を、Cas9およびsgRNA発現プラスミドもしくはリニアなDNAのPCR産物によってトランスフェクションするか、または50nMのCas9蛋白質、250nMの精製されたsgRNA、およびカチオン性脂質によって処置するか(U2OS-EGFPレポーター細胞へのCas9蛋白質送達について先に記載された通り)のいずれかをした。プラスミドに基づくトランスフェクション実験のためには、Cas9発現プラスミドの700ng+sgRNAプラスミドの250ngまたはリニアなDNAのPCR産物の50ng(EMX1、CLTA2、またはVEGF遺伝子座いずれかをターゲット化するためのsgRNAを発現する)をLipofectamine 2000(Life Technologies)によってトランスフェクションし、細胞を2日後に単離した。インビボの蛋白質送達実験のためには、マウス組織の約30mgを、麻酔したマウスから以前に記載された通り単離し55、ゲノムDNAをAgencourt DNA AdvanceゲノムDNA単離キット(Beckman Coulter)を用いて抽出した。細胞培養実験のためには、ゲノムDNAを上で記載されている通り単離した。ゲノムDNAの150ngを鋳型として用いて、下で規定されるフランキングHTSプライマー対によってオンターゲットおよびオフターゲットゲノム部位をPCRによって増幅した。粗製PCR産物の相対量はゲル電気泳動によって定量し、異なるsgRNA対またはCas9ヌクレアーゼ型によって処置されたサンプルは、QIAquick PCR精製キット(Qiagen)による精製前に等モル濃度で別々にプールした。プールされたDNAのおよそ150ngを、5%TBEの18ウェルCriterionPAGEゲル(BioRad)を用いて200Vで30min電気泳動し、長さ約125bp~約300bpのDNAをQIAquick PCR精製キット(Qiagen)によって単離および精製した。精製されたDNAを、シーケンシングアダプターを含有するプライマーによるPCRによって増幅し、精製し、以前に記載された通りにMiSeqハイスループットDNAシーケンサー(Illumina)によってシーケンシングした47
データ分析
Illuminaシーケンシングリードを、下で略記されている通り、UnixのBashで書かれたスクリプトによってフィルタリングおよびパースした。シーケンシング実験のためのサンプルサイズを(現実的な実験上の考慮事項の範囲内で)最大化して、効果を検出するための最大の検定力を保証した。Cas9によって改変されたゲノム部位についての統計分析(表2)は、ボンフェローニ法を用いる多重比較補正によって、以前に記載されている通り実施した56
以下は、各ゲノムターゲット部位についての上流および下流フランキング配列のリストである。
sgRNAのT7転写のための基質として働くPCR産物を生成するためのプライマー。
T7_gRNA-Revは全ての場合に用いた。用いたDNA鋳型は、上で注意された通りEGFPのsgRNAプラスミドであった。dCas9-VP64活性化因子実験のためのNTF3およびVEGFのsgRNAは以前に報告されている(Maeder et al., CRISPR RNA-guided activation of endogenous human genes. Nat. Methods. 2013; 10, 977-979)。
トランスフェクションのためのリニアなDNAのPCR産物を生成するためのプライマー
下に列挙されているPCR_sgRNA-fwd1、PCR_sgRNA-rev2、および適切なPCR_sgRNAプライマーによる、鋳型としてのU6プロモーターを含有するプラスミドの(72℃,3min)でのPCR伸長。
結果
超負荷電蛋白質に融合されたCreリコンビナーゼの高度に効率的な送達
核酸の高度にアニオン性の静電気的特性をゲノム編集蛋白質に分け与えることは、カチオン性脂質を用いる哺乳類細胞内へのそれらの効率的な送達を可能にし得るということが推測された(図27(A))。自然には高度に負に荷電していない興味ある蛋白質については、天然のまたは操作された超負荷電蛋白質との融合が17、ポリアニオン性の性格を分け与えるであろうと考えられた。核酸結合蛋白質については、自然のDNAまたはRNA基質との単純な複合体化が、カチオン性脂質に基づく送達を支持するための充分なアニオン性の性格を提供し得るということが推測された(図27(A))。
操作された超負荷電GFPバリアント35の(-30)GFPが、融合した蛋白質カーゴの封入および送達を媒介し得るかどうかを、最初に試験した(図27(B))。(-30)GFPをCreリコンビナーゼに融合し、数個の市販のカチオン性脂質を、Creによって媒介される組み換え時にのみDsRedを発現するHeLa細胞内に融合体を機能的に送達するそれらの能力について試験した(図28(A))。10%ウシ胎児血清(FBS)を含有する培地中で、1.5μLのLipofectamine RNAiMAX(以降では「RNAiMAX」と言われる。Life Technologies,Carlsbad CA)と複合体化した10nMの(-30)GFP-Creの送達は、処置された細胞の中で強いDsRed蛍光シグナルにつながった。蛍光活性化セルソーティング(FACS)から、処置の48時間後には細胞の52%がDsRedを発現したということが明らかにされ、これはCre組み換えと一致している(図28(B))。
最適化は、10%FBSを含有する培地の250μL中で、1.5μLのRNAiMAXと複合体化した25nMの(-30)GFP-Creを用いて65%の組み換え効率をもたらした(図28(C))。脂質によって媒介されるアニオン性Cre送達の効力は、カチオン性蛋白質によって媒介される送達のものと比較して著しい。15~20%の組み換えられた細胞をもたらすには、1nMの(-30)GFP-Creとカチオン性脂質のみを必要とした。一方、組み換えのこの程度を達成するためには1μMの(+36)GFP-Creが要求され、これは送達効力の1,000倍の違いを表している(図28(C))。ほぼ同一の結果が第2のCreレポーター細胞株(BSR TdTomato)において観察された(図33(A))。カチオン性脂質の量を増大させると毒性が増大し(図33(B))、250μLのサンプルあたり1.5μLのRNAiMAXが組み換え効率を最大化し、一方で最小限の細胞毒性を誘導するということが見いだされた。それらの条件では、カチオン性脂質は、中性またはカチオン性のCreリコンビナーゼ融合体の送達効力を増大させなかった(図28(C)および図33(C))。これは、(-30)GFP-Creの強い負の電荷が、カチオン性脂質によって媒介される送達に加わるために要求されたということを示している。カチオン性脂質の量を増大させると、最大限の組み換えに要求される蛋白質の濃度が増大するということもまた観察された。これは、送達可能な蛋白質がカチオン性脂質の特異的な化学量論と複合体化するというモデルと一致している(図28(D))。これらの観察は、まとめると、カチオン性脂質が、血清の存在下であっても哺乳類細胞内へのポリアニオン性蛋白質の強力な送達を媒介し得るということを示している。
カチオン性蛋白質によって媒介される送達に対して、カチオン性脂質によって媒介される(-30)GFP-Cre送達のより高い効力が、細胞によるより多くの合計の蛋白質取り込みに起因するか、または細胞に入る機能的な非エンドソーム蛋白質分子のより高い画分に起因するかどうかを決定するために、フローサイトメトリーを用いて、細胞のGFP蛍光を測定した。細胞は、それらのそれぞれの最適なCre送達条件で、(+36)GFP-Creまたはリポソーム(-30)GFP-Creいずれかによって処置された。細胞内蛍光および組み換え効率の比較は、(-30)GFP-Creの脂質によって媒介される機能的な送達が、(+36)GFP-Creの送達よりも、エンドサイトーシスされる蛋白質の量あたり9,800倍強力であるということを明らかにしている(図34)。一緒にすると、これらの結果は、アニオン性蛋白質の脂質によって媒介される送達の異常に高い効力が、各細胞の異常に高い蛋白質取り込みではなく、むしろ、細胞質へのエンドソーム脱出およびリソソーム蛋白質分解の回避を包含する可能性が高いエンドサイトーシス後プロセスに起因するということを示唆している。
ポリアニオン性蛋白質を送達する能力がRNAiMAXの固有の構成物に依存しているのか、または他のカチオン性脂質が強力な送達を類似に媒介することができるのかどうかを試験するために、核酸を送達するために設計された数個の他のトランスフェクション試薬を試験した(図28(E))。RNAiMAXは(-30)GFP-Creに最も有効な機能的な送達剤のまま残ったが、一方、他のカチオン性脂質製剤もまた強力な送達をもたらした。Lipofectamine 2000およびLipofectamine LTX(Life Technologies,Carlsbad CA)(カチオン性脂質製剤に基づく2つのプラスミドトランスフェクション試薬21)ならびにSAINT-Red(Synvolux Therapeutics,Groningen Netherlands)(合成ピリジウム含有カチオン性脂質を含有するsiRNA送達製剤)は、全て、広範囲の濃度に渡って強い機能的な(-30)GFP-Cre送達をもたらした(図28(E))。対照的に、カチオン性脂質DOTAP(Roche Diagnostics,Indianapolis IN)またはペプチドに基づく核酸送達剤EZ-PLEX(Ascension Bio,Tampa FL)による強い送達は観察されなかった(図28(E))。これらの観察は、まとめると、数個の(しかし全てではない)カチオン性脂質が負荷電蛋白質を封入してヒト細胞内に送達する能力があるということを示している。
(-30)GFP以外のポリアニオン性蛋白質を送達するためにカチオン性脂質を用いることが可能なはずだということが推測された。バイオメディカル研究に普通に用いられる操作されたポリアニオン性蛋白質ドメインは、VP64活性化ドメイン(-22の正味の理論上の電荷)(転写活性化のための操作されたジンクフィンガーアレイ、TALEリピートアレイ、またはdCas9との融合体に広く用いられる)および3×FLAG(-7の正味の理論上の電荷)(蛋白質精製および可視化に用いられるエピトープタグ)を包含する(図28(F))。VP64および3×FLAGが両方とも、(-30)GFPほど有効にではないがカチオン性脂質によるCreリコンビナーゼの機能的な送達を向上させるということが観察された。これは、それらのより低い負の総電荷が原因である可能性が高い(図33(C))。これらの観察は、(-30)GFP以外の異常に負に荷電した蛋白質が、哺乳類細胞内への効率的なカチオン性脂質に基づく送達を媒介し得るということを実証している。
TALE活性化因子蛋白質の機能的な送達
培養ヒト細胞内へのTALE-VP64転写活性化因子(およそ+4の理論上の正味電荷。用いられるTALEバリアントに依存する)の脂質によって媒介される送達を試験した。送達されたTALEN蛋白質による内在性遺伝子のわずかに有効な切断が、Argなどのカチオン性ペプチドを用いて血清の非存在下の哺乳類細胞において実証されているが36、一方で、TALEに基づく転写因子蛋白質の送達はまだ報告されておらず、血清中でのTALE蛋白質の有効な送達は本発明者の知る限り以前には記載されていない。ニューロトロフィン-3(NTF3)(神経変性疾患と結びつけられている神経成長因子)の遺伝子をターゲット化した37。以前に記載されているNTF3をターゲット化するTALE-VP6438を(-30)GFPに融合し(図29(A))、Cre送達のために最適化された条件で25nMの(-30)GFP-NTF3-TALE1-VP64およびRNAiMAXによってHEK293T細胞を処置した。処置の4時間後のNTF3の遺伝子発現レベルは、25nMの(-30)GFP-NTF3-TALE-VP64およびRNAiMAXによって処置された細胞においては、未処置の細胞、RNAiMAXのみによって処置された細胞、またはVEGFをターゲット化するTALE転写活性化因子によって処置された細胞よりも3.5倍高かった(図29(B))。NTF3発現の同程度のレベルが、同じNTF3をターゲット化するTALE-VP64をコードするプラスミドのトランスフェクションの48時間後に観察された(図29(B))。
同じ遺伝子の異なる部位をターゲット化する複数のTALE活性化因子の相乗的発現は、遺伝子活性化を増強することが示されているので38、(-30)GFPに融合した5つの別個のNTF3をターゲット化するTALE活性化因子を、RNAiMAXを用いて一斉に送達した。蛋白質-脂質複合体を、5つの(-30)GFP-NTF3-TALE-VP64蛋白質をそれぞれ5nMで追加して合計で25nM蛋白質にすることによって上の通り調製した。NTF3発現の6.5倍の増大が4時間のインキュベーション後に観察され(図29(B)および図35)、一方、48時間のインキュベーションが続く全ての5つのNTF3-TALE活性化因子のプラスミドコトランスフェクションは、NTF3発現レベルの10倍の増大をもたらした(図29(B))。これらの知見は、TALE活性化因子蛋白質がカチオン性脂質を用いて送達されて、ヒト細胞において遺伝子発現を一過的に活性化し得るということを実証している。プログラミング可能な転写活性化因子蛋白質の送達はターゲット遺伝子の一度きりの活性化を可能にし得、一方では、慢性的な遺伝子発現(プログラミング可能な転写因子のDNAに基づく送達の一般的な課題)を回避する。この能力は、一過的に発現されたときに細胞状態または細胞運命の一度きりの永久的な変化を実現する蛋白質に、とりわけ貴重になり得る39
ヒト細胞内へのCas9:sgRNA蛋白質:RNA複合体の高度に効率的な送達
完全血清培地中でのポリアニオン性のCreおよびTALE活性化因子蛋白質バリアントの強力な脂質によって媒介される送達を見ると、CRISPR-Cas9:sgRNA複合体もまた、(-30)GFPとの融合体としてまたは自然のポリアニオン性Cas9:ガイドRNA複合体としてのいずれかで、この手法を用いてヒト細胞に送達され得るということが推測される。良く確立されたCas9によって誘導される遺伝子破壊アッセイ40を用いて、ヒトU2OS細胞内のゲノムEGFPレポーター遺伝子中の特異的な部位をターゲット化した(図36(A))。オンターゲットCas9切断は、EGFP内の非相同末端結合(NHEJ)および細胞の蛍光の喪失を誘導する。(-30)GFPの蛍光からの干渉を回避するために、Y67S変異を(-30)GFPに導入してその蛍光を消去し、この非蛍光性バリアントを(-30)dGFPと名付けた。
10%FBSを含有する培地中での、25nMの(-30)dGFP-NLS-Cas9と50nMのEGFPをターゲット化するsgRNAとによる、RNAiMAXによるU2OSレポーター細胞の処置は、細胞の48%においてEGFP発現の喪失を示した(図30(A))。Cas9またはsgRNAを発現するプラスミドのコトランスフェクションは、細胞の37%に類似のEGFP喪失をもたらした(図30(A))。有意なEGFP破壊は、EGFPのsgRNAをコードするプラスミド単独のトランスフェクション、Cas9単独、またはCas9とVEGF遺伝子座をターゲット化するように設計されたsgRNAとをコードするプラスミドのコトランスフェクションによっては観察されなかった(図30(A)、図36(B))。EGFPの堅牢な破壊が細胞毒性の結果ではないということが確認された(図36(C)~(D))。10%FBS血清の存在下での(+36)dGFP-NLS-Cas9およびsgRNAによる細胞の処置が、効率的な遺伝子破壊につながらないということもまた観察された(図30(A))。これは、Cas9およびsgRNAのための送達のカチオン性ペプチドに基づく方法が有効でないということを示唆しており、恐らくは、超正荷電蛋白質によるgRNA:Cas9複合体形成またはヌクレアーゼ機能の干渉が原因である41。一緒にすると、これらの結果は、(-30)dGFP-NLS-Cas9:sgRNA複合体のカチオン性脂質によって媒介される送達が、効率的なsgRNA依存的なターゲット遺伝子破壊をヒト細胞においてもたらし得るということを確立している。
ポリアニオン性sgRNAは、効率的な脂質によって媒介されるCas9送達に必要充分である
自然のCas9蛋白質(+22の正味の理論上の電荷)とsgRNA(約103個のアニオン性リン酸基)との複合体は総合的に高度にアニオン性であるはずなので、次に、ポリアニオン性蛋白質への融合無しの自然のCas9:sgRNA複合体が、カチオン性脂質を用いてヒト細胞内に送達され得るかどうかを試験した。100nMのCas9、100nMのEGFPのsgRNA、および0.8μLのRNAiMAXによるU2OSのEGFPレポーター細胞の処置は、EGFPレポーター遺伝子の65%の破壊をもたらした(図30(A))。Cas9蛋白質およびsgRNAによる、RNAiMAX無しでの細胞の処置は、GFP蛍光の喪失をもたらさなかった(図30(A))。これらの観察は、sgRNA単独が、超負荷電融合蛋白質の非存在下でさえも、Cas9のカチオン性脂質に基づく送達を媒介するために必用とされる高度にアニオン性の性格を提供し得るということを示唆している。
(-30)dGFP-NLS-Cas9:sgRNA対Cas9:sgRNAのカチオン性脂質によって媒介される送達に起因する遺伝子破壊効率の比較から、低い用量では、(-30)dGFP-NLS-Cas9が自然のCas9よりも効率的な遺伝子破壊をもたらし(図37(A))、より高い濃度、さらにはいずれもの蛋白質のそれぞれの最適な蛋白質:sgRNA用量では自然のCas9が凌ぐということが明らかになった(図37(B)~37(C))。これらの結果は、sgRNAが、複合体化したCas9蛋白質のカチオン性脂質に基づく送達を支持するために充分な負電荷を供給し得るということをさらに確立している。
(-30)dGFP-NLS-Cas9の最適な送達のためにはCas9よりも総合的により少ない蛋白質が要求されるが、一方で、最大限の(-30)dGFP-NLS-Cas9によって媒介されるEGFP遺伝子破壊のためには、自然のCas9によって媒介される遺伝子破壊よりも高いsgRNA:蛋白質比が要求されるということもまた観察された(図37(D))。sgRNAのより多い当量が、(-30)dGFP-NLS-Cas9と複合体化するために必用とされるということが推測される。なぜなら、融合した(-30)dGFPがCas9:sgRNA複合体化に静電気的に干渉し得るからである。(-30)dGFP-NLS-Cas9によって媒介されるEGFP遺伝子破壊のための理想的な蛋白質用量は、野生型Cas9のものよりも10倍低いので、結果は、(-30)dGFP-Cas9が、そのより高い負の総電荷が原因で、Cas9:sgRNAよりもカチオン性リポソームによってより良く封入されるということをもまた示唆している。しかし、この電荷の大きさはCas9:sgRNA相互作用に干渉し得、より多くのsgRNAを蛋白質あたり要させ、可能性として、合計の送達されるCas9活性を低減する。加えて、NLS-Cas9およびCas9-NLS蛋白質を生成して試験した。(-30)dGFP-NLS-Cas9中のNLSの存在が、非常に低い濃度での送達有効性の違いを少なくとも部分的に説明し得るが、一方で、Cas9、NLS-Cas9、およびCas9-NLSは全て、25nM以上の濃度において(-30)dGFP-NLS-Cas9よりも高いEGFP破壊の効率をもたらすということが観察された(図38(A)~(C))。
RNAiMAX以外のカチオン性脂質製剤によるCas9:sgRNA送達もまた試験した。Lipofectamine 2000による送達はRNAiMAXよりも著しく効率的であり、80%までのCas9によって媒介される遺伝子破壊をもたらし(図39(A))、1nM蛋白質でさえも高い効率(60%の遺伝子破壊)を維持した(図39(A))。しかしながら、細胞培養条件でRNAiMAXと比較してLipofectamine 2000のやや高い毒性が原因で(図33(B)~(C))、RNAiMAXを全てのその後の細胞培養研究に用いた。
EGFP破壊がCas9結合のみではなくゲノム改変に起因するということを検証するために42、T7エンドヌクレアーゼI(T7EI)アッセイ43を用いて、ターゲットEGFP遺伝子座におけるCas9によって媒介されるゲノム挿入/欠失変異(インデル)の頻度を検出および定量した(図30(B))。T7EIアッセイの結果は、Cas9およびEGFPのsgRNAプラスミド両方、またはCas9蛋白質および精製されたEGFPのsgRNAによって処置された細胞のみが、ターゲット部位にインデルを含有するということを示した。一緒にすると、これらの知見は、活性なCas9:sgRNA複合体が、sgRNAによって提供される負電荷に依存する様式で、カチオン性脂質と一緒にヒト細胞内に強力に送達され得るということを確立している。
U2OSのEGFPレポーター細胞を、EGFP、CLTA、EMX、およびVEGFをターゲット化する4つのgRNAの混合物と複合体化したCas9の、単一の脂質によって媒介される送達処置によってもまた処置した。この処置は、全ての4つのターゲットの効率的な破壊をそれぞれ58%、28%、16%、および40%の切断効率でもたらした(T7EI切断アッセイによって測定)。50nMのCas9および各sgRNAの25nM(100nMの合計のsgRNA)の単一の送達からのこれらの高い遺伝子破壊効率は、脂質によって媒介されるCas9:sgRNA送達が効率的な多重ゲノム編集を支持し得るということを実証している(図30(C))。
Cas9ニッカーゼおよびdCas9活性化因子の機能的な送達
次に、カチオン性脂質に基づく蛋白質送達が拡張されて、他のCas9由来のゲノム操作ツール(例えばCas9ニッカーゼ44およびCas9に基づく転写活性化因子)を送達し得るかどうかを試験した45。Cas9D10Aニッカーゼの送達からもたらされるU2OSのEGFPレポーター細胞における遺伝子破壊効率を、ニッカーゼと適切な対のEGFPをターゲット化するsgRNAプラスミドとのコトランスフェクションによって、またはRNAiMAXを用いてEGFPのsgRNAの対と複合体化された精製された蛋白質として、いずれかで測定した(図30(D))。二体型(dual)Cas9ニッカーゼのプラスミドおよびカチオン性脂質によって媒介される蛋白質:RNA送達は両方とも、反対鎖をターゲット化するsgRNA対(sgRNA対g1+g5およびg3+g7)の存在下のみで、類似の効率でEGFP破壊をもたらしたが(図30(D))、同じ鎖をターゲット化するsgRNA対(sgRNA対g5+g7)ではもたらさなかった(図30(D))。これは、Cas9ニッカーゼ切断要件の以前の報告と一致している46
VP64活性化ドメインに融合したdCas9のプラスミドトランスフェクションまたは直接的な蛋白質:sgRNA複合体送達いずれかからもたらされるHEK293T細胞におけるNTF3転写活性化効率もまた比較した45。プラスミドトランスフェクションまたはRNAiMAXによって媒介される蛋白質送達いずれかによるdCas9-VP64活性化因子の送達は、NTF3転写の強い(≧約10倍)活性化をもたらした(図30(E)および図40)。プラスミドトランスフェクションからもたらされる転写活性化レベルは、各送達法の最適なアッセイ時間においては、蛋白質送達からもたらされる活性化よりも強力であった(図30(E))。これは、可能性として、精製された蛋白質およびRNAの一過的な単一の用量と比較して、プラスミドからのCas9活性化因子蛋白質およびsgRNA両方の持続的な発現が原因である。上の結果は、かかる因子が、送達されるCas9ヌクレアーゼおよびニッカーゼ蛋白質による不可逆的なゲノム改変の効力を限定しないということを示しているが(図40(A)および40(D))、一方で、送達される蛋白質の低い用量および一過的な性質は、転写活性化などの動的プロセスの効力をより強く限定し得る。それにもかかわらず、これらの結果は、まとめると、Cas9ニッカーゼおよびCas9転写活性化因子が両方とも、カチオン性脂質によって媒介される蛋白質:RNA複合体送達によって有効に送達され得るということを示している。
Cas9:sgRNA送達はDNAトランスフェクションよりも高い特異性でゲノムを改変する
機能的なCas9:sgRNA複合体のDNAによらない送達は、ウイルスまたは他の遺伝子送達法と結びついたリスクを避けており、ターゲット遺伝子座が改変された後にゲノム編集薬剤の不必要な発現を回避することによって、ゲノム改変の特異性を改善する可能性を有する。記載される手法がヒト細胞内の内在性遺伝子を破壊し得るかどうかを試験するために、EMX1、CLTA2、およびVEGF遺伝子内のゲノム遺伝子座をターゲット化した。これは、それらの可能性あるバイオメディカルとの関係およびCas9オフターゲット切断活性の以前の研究におけるそれらの使用が原因である40、46、47。HEK293T細胞内へのCas9:sgRNA複合体のカチオン性脂質によって媒介される送達は、全ての3つのヒト遺伝子の堅牢な切断をもたらし、効率は、プラスミドトランスフェクション法のものと同程度かまたはそれよりも高かった。これは、U2OS細胞について以前に最適化された同じCas9:sgRNA送達条件を用いるT7EIアッセイによって明らかにされた(図31(A))。
Cas9についてプラスミド対蛋白質:RNA送達法の内在性遺伝子改変特異性を比較するために、HEK293細胞から単離されたゲノムDNAから、オンターゲット遺伝子座、さらには数個の既知のオフターゲット部位を増幅した(図44)。細胞は、同程度のオンターゲット改変効率をもたらした条件で、Cas9およびsgRNA発現プラスミドのトランスフェクションによって、またはRNAiMAXによって媒介されるCas9:sgRNA複合体送達によって、いずれかで処置された。3つのオンターゲットおよび11個のオフターゲット部位におけるインデル頻度を、ハイスループットDNAシーケンシングによってアッセイした(図45)。全ての3つのターゲット遺伝子について、プラスミドまたは蛋白質:sgRNA送達いずれかからもたらされるオンターゲットDNA改変の頻度は、およそ10%であった(図41(A)~(C))。これは、非常に類似のオンターゲットゲノム改変効率をもたらす処置条件での2つの技術間のオフターゲット改変の比較を可能にする。重要なことに、全ての11個のオフターゲット部位についてオフターゲットゲノム改変の頻度はプラスミド送達と比較して蛋白質:sgRNA送達で低く、結果として、試験された全ての部位のオンターゲット対オフターゲット改変の比は、蛋白質:sgRNA送達ではプラスミド送達よりも19倍まで高かった(図31(B)~(D))。
DNA改変特異性は、オフターゲット改変の高いレベルを有する遺伝子座(例えば4つのVEGFオフターゲット部位。それらでは、プラスミド送達は4~20倍の平均のオンターゲット:オフターゲット改変比を生むが、蛋白質:RNA送達は9~400倍の平均のオンターゲット:オフターゲット改変比を生む)、さらにはオフターゲット改変のより低いレベルを有する遺伝子座(例えば3つのEMXオフターゲット遺伝子座。それらでは、プラスミド送達は64倍ほども低い平均のオンターゲット:オフターゲット改変比を生むが、蛋白質:RNA送達は500~2,000倍の平均のオンターゲット:オフターゲット改変比を生む)で、プラスミド送達よりも蛋白質:sgRNA送達の方が高かった。一緒にすると、これらの結果は、カチオン性脂質を用いるCas9:sgRNA複合体の送達が、高い効率で、かつCas9およびsgRNAを発現するDNAの送達よりも実質的に高い特異性でターゲット遺伝子改変を実現し得るということを示している。
マウス胚性幹細胞内へのCas9:sgRNAの送達
効率的で永久的な高度に特異的な遺伝子編集を実現するための、Cas9:sgRNAの強力で一過的なカチオン性脂質によって媒介される送達は、幹細胞においてとりわけ有用であり得る。この可能性を試験するために、Tau-EGFPを発現するマウス胚性幹細胞48を、Cas9とEGFPをターゲット化するsgRNAとによって処置した。標準的な幹細胞培養条件で、EGFP陽性の浮遊スフィアが形成された。浮遊スフィアを、RNAiMAXと複合体化したCas9:sgRNAによって、またはコントロールとしてsgRNA無しのRNAiMAXおよびCas9によって処置した。処置後3日目に、コントロールサンプルと比較して、Cas9:sgRNAによって処置されたスフィアにおけるGFP蛍光の低減が観察された(図42(A))。処置されたスフィアを解離させ、細胞がゼラチンコートディッシュに接着して前駆細胞に分化することを可能とした。抗GFP抗体を用いる免疫組織化学から、Cas9:sgRNAによって処置されたサンプルの細胞のEGFP発現のノックダウンが確認され、多くの核はいずれかの明らかなEGFPを欠いていた。対照的に、コントロールスフィアに由来する全ての細胞はEGFP陽性であった(図42(B))。Cas9:sgRNAによって処置された細胞から集めたゲノムDNAをT7EIアッセイに供して、Tau-EGFP遺伝子座におけるインデルの明確な証拠がもたらされた(図42(C))。このアッセイから、42%のインデル頻度が、カチオン性脂質によって媒介されるCas9:sgRNA送達とCas9およびsgRNAのDNAのトランスフェクションとの両方から計算された。ターゲット改変は、Cas9:sgRNAを欠くかまたはCas9と関連しないgRNAとを含有するコントロールサンプルにおいては検出されなかった。これらの知見は、カチオン性脂質によって媒介されるCas9:sgRNA送達が、マウス胚性幹細胞において高度に効率的な遺伝子破壊を実現し得るということを実証している。
CreリコンビナーゼおよびCas9:sgRNAのインビボのカチオン性脂質によって媒介される送達
インビボの機能的なゲノム編集蛋白質の高効率送達は、遺伝子疾患を修正するための非ウイルス治療用のゲノム編集を包含する広範な応用を可能にする。生体哺乳動物において上に記載された蛋白質送達法を評価するために、マウス内耳への送達を選んだ。これは、その限られた空間、良く特徴づけられた内耳細胞型、および将来の聴覚回復研究を可能にし得る遺伝性難聴マウスモデルの存在が原因である。マウス内耳(inner year)への蛋白質の2つの型のインビボ送達を試みた。最初に、(-30)GFP-Cre蛋白質の送達を試験して、内耳細胞型のターゲット化および機能的な蛋白質送達の効率を評価した。第2に、内耳へのCas9:sgRNA複合体の送達を評価して、カチオン性脂質によって媒介される蛋白質:gRNA複合体送達が、CRISPRに基づく遺伝子編集をインビボで支持し得るかどうかを決定した。
(+36)GFP-Creがマウス網膜に送達され得るということが以前に示されているが16、蛋白質は、非効率的なインビボ送達を示唆する組み換え変換のわずかなレベルのみをもたらした。本発明者の当初の内耳送達試験においては、(-30)GFP-CreをRNAiMAXと複合体化し、複合体を、ゲノムインテグレーションされたfloxed-STOP-tdTomatoレポーターを有する生後0日目(P0)のレポーターマウスの蝸牛に注射した。以前に記載されたインビトロCreレポーター細胞株と同じく、エンドソーム脱出、核局在、およびCreによって媒介される組み換えが続く内耳細胞へのCreの機能的な送達は、tdTomatoの発現をもたらす。注射後に、tdTomatoとの共局在について内耳細胞マーカーを免疫標識するために蝸牛を集めた。RNAiMAX注射単独をコントロールとして用いた。(-30)GFP-CreおよびRNAiMAXの注射に続く5日に、蝸牛の外有毛細胞(音を検出する聴覚感覚細胞)は有毛細胞マーカーミオシンVIIa(Myo7a)と共局在する強いtdTomatoシグナルを示し、有毛細胞への機能的なCre送達を実証した(図32(A)~(B))。tdTomato発現はコントロール蝸牛においては検出されなかった(図32(A))。tdTomatoシグナルは蝸牛の基部渦巻きの注射部位の領域に濃縮されていた。平均で、外有毛細胞の33±3%が蝸牛の基部においてtdTomato陽性であった(P<0.001、平均±SEM、n=4)。
ターゲット化された細胞にカチオン性脂質によって媒介される(-30)GFP-Cre蛋白質送達が及ぼす効果をさらに決定するために、有毛細胞の不動毛(聴覚に必須である繊細な構造)を注射後10日に調べた。TdTomato陽性の外有毛細胞は、コントロール不動毛と類似の典型的な不動毛構造(espin発現によってイメージングされる)を有した(図32(B))。tdTomato発現はコントロール蝸牛においては検出されなかった。これらの観察は、(-30)GFP-Cre蛋白質のカチオン性脂質によって媒介される送達が、有毛細胞構造に明らかに影響を及ぼすこと無しに蝸牛の外有毛細胞における組み換えを実現するということを示している。
インビボのターゲット体積、蛋白質用量、およびsgRNA用量は細胞培養実験とは異なるので、上の実験は異なる送達条件で反復した。Lipofectamine 2000を用いる送達を、インビトロにおけるそのより高い効力が原因で試験し(図39(A))、劇的により高い組み換え効率が観察された。(-30)GFP-Cre+Lipofectamine 2000によって処置された蝸牛の90%超の外有毛細胞はtdTomato陽性であった(図32(C))。コントロールサンプルと比較して、若干の外有毛細胞喪失が観察された(図32(C))。これは、Lipofectamine 2000のより高い細胞毒性の以前の観察と一致している。しかし、総合的な蝸牛構造は維持されていた。
インビボのCas9:sgRNA送達の有効性を試験するために、Cas9とEGFPをターゲット化するsgRNAとをRNAiMAXと組み合わせ、もたらされた複合体を、生後2日目(P2)のトランスジェニックAtoh1-GFPマウスの蝸牛(転写因子Atoh1の有毛細胞特異的なエンハンサーのコントロール下で全ての有毛細胞がGFPを発現する49)に注射した。このモデルを用いると、EGFPのCas9:sgRNAによって媒介される破壊は、外有毛細胞のEGFP蛍光の喪失をもたらす。カチオン性脂質とCas9:sgRNAの注射の10日後に、GFPの非存在が注射部位近くの外有毛細胞の13%において観察された。対照的に、いずれかのsgRNA無しでCas9蛋白質およびRNAiMAXを注射されたコントロール蝸牛は、EGFPシグナルの喪失を示さなかった(図32(D))。Cas9:sgRNAのRNAiMAX複合体を注射された蝸牛の外有毛細胞は、別様に影響を及ぼされないように見え、Myo7aの類型的な発現と健康な核とを有した。これは最小限の有毛細胞毒性と一致している(図32(D))。蝸牛組織サンプルから単離されたゲノムDNAのハイスループットDNAシーケンシングは、sgRNAを欠くコントロールサンプルではなく、処置されたサンプルにおいて、GFPターゲット遺伝子破壊と一致するインデルを明らかにした(図43(A))。加えて、EMX遺伝子をターゲット化するsgRNAを用いるCas9:sgRNAの内耳のインビボ送達を反復し、コントロール動物ではなく処置された動物におけるEMX遺伝子内のインデルが類似に観察された(図43(B))。
Lipofectamine 2000と複合体化した(-30)GFP-Creは、RNAiMAXと複合体化した(-30)GFP-Creよりもターゲット有毛細胞集団の効率的な改変をもたらしたので(図32(A)および32(C))、Atoh1-GFP蝸牛へのCas9:sgRNA送達時のその使用を、上の通り試験した。GFP発現の喪失が10日後の注射部位近くの外有毛細胞の20%において観察された。一方、全ての外有毛細胞は、sgRNA無しでCas9およびLipofectamine 2000を注射されたコントロール蝸牛において強いGFP発現を維持した(図32(D))。(-30)GFP-CreのLipofectamine 2000送達後に観察されたわずかな有毛細胞喪失とは対照的に(図32(C))、Cas9:sgRNAによってターゲット化された外有毛細胞は明らかな毒性または構造上の変化を示さなかった(図32(D))。
(-30)GFP-Creと同じく、マウス内耳へのCas9:sgRNAのウイルスによらないカチオン性脂質によって媒介される送達は、外有毛細胞集団中の特異的なゲノム遺伝子座を首尾よく改変し、これはターゲット遺伝子発現の喪失につながった。遺伝性難聴の全ての型のほぼ半分は、有毛細胞の喪失または不全に起因する50。本明細書において提出されている結果は、聴覚回復を実現するためにそれらの細胞を遺伝子改変するための、Cas9:sgRNA複合体の送達に基づく可能性ある戦略を示唆している。
(-30)GFP-Creについての蛋白質送達有効性の決定
カチオン性蛋白質送達のものと比較して、リポソームによって媒介される(-30)GFP-Cre送達の高い効力が、細胞によるより多くの合計の蛋白質取り込みに起因するのか、または細胞によって取り込まれる機能的な非エンドソーム蛋白質分子のより高い画分に起因するのかを決定するために、フローサイトメトリーを用いて、それらのそれぞれの最適なCre送達条件で(+36)GFP-Creまたはリポソーム(-30)GFP-Creによって処置した細胞のGFP蛍光を測定した。細胞蛍光は、エンドソームまたは非エンドソーム局在に関係なく合計のエンドサイトーシスされた(-30)GFP-Creまたは(+36)GFP-Creを報告している。脂質によって媒介される蛋白質送達は、脂質によって媒介される機能的なCre送達の高効率にもかかわらず、合計の蛋白質取り込みの驚くほど小さい増大をもたらした(図34(A))。(+36)GFP-Cre処置は、用量依存的な様式で3桁まで細胞内GFP蛍光を増大させた(図34(A))。これは以前の報告と一致する1、2。一方、リポソーム(-30)GFP-Cre処置は、細胞内GFP蛍光の多くて5倍の増大を誘導した(図34(A))。細胞内蛍光および組み換え効率の比較は、(-30)GFP-Creの脂質によって媒介される機能的な送達が、(+36)GFP-Creの送達よりも、エンドサイトーシスされた蛋白質の量あたり9,800倍強力であるということを明らかにしている(図34(B))。
カチオン性脂質とのアニオン性(-30)GFPの複合体化がGFP蛍光と干渉し、それゆえに細胞に入るカーゴの本当の量を覆い隠すかどうかを試験するために、mCherry(これは蛍光性だが高度にアニオン性ではない)を(-30)GFPまたは(+36)GFPいずれかに融合し、HeLa細胞に両方の蛋白質融合体を送達した。細胞表面に付着しており得るが細胞に入らなかった蛋白質をPBS+ヘパリン(20U/mL)によって洗浄した後、細胞を、処置の4時間および24時間後にmCherry蛍光についてFACSによって分析した。(-30)GFPが融合したmCherryの脂質によって媒介される送達は、細胞内mCherry蛍光の軽度の増大のみをもたらすということが観察された。一方、(+36)GFP-mCherryの送達によるmCherry蛍光は一般的に≧100倍高かった(図34(C))。これは、(-30)GFPへの融合が、蛋白質カーゴの実質的な量が細胞に入ることを引き起こさないということを示唆している。その上、(-30)GFP-Creへの脂質の追加は、カチオン性脂質およびアニオン性(-30)GFPが明確に相互作用するという事実にもかかわらず、GFP蛍光シグナルを測定可能には変化しなかった(図34(D))。一緒にすると、これらの結果からは、アニオン性蛋白質の脂質によって媒介される送達の異常に高い効力が、各細胞における異常に高い蛋白質取り込みではなく、むしろ蛋白質分解の回避および細胞質へのエンドソーム脱出を包含する可能性が高いエンドサイトーシス後プロセスに起因するということが示唆される。
オフターゲット切断アッセイの感度限界
ゲノムオフターゲット切断を検出するためのハイスループットシーケンシング法の感度は、各ゲノムターゲット部位のPCR増幅へのゲノムDNA(gDNA)インプット量によって限定される。ヒトgDNAの1ngサンプルはおよそ330個のユニークなゲノムを表すのみであり、それゆえに各ゲノム部位のおよそ330個のユニークなコピーのみが存在する。各ゲノムターゲットのPCR増幅はインプットgDNAの合計150ngで行った。これは、多くて50,000個のユニークなgDNAコピーに由来するアンプリコンをそれぞれ提供する。そのため、ハイスループットシーケンシングアッセイでは、50,000分の1(0.002%)未満の頻度で起こる稀なゲノム改変イベントを検出し得ない。この限界は表2において注意されている。
一緒にすると、これらの知見は、ゲノム編集蛋白質のカチオン性脂質によって媒介される送達が、遺伝子疾患の処置に強力なツールおよびインビボ戦略として働き得るということを示唆している。
結論
インビトロ、とりわけインビボの効率的な細胞内蛋白質送達は、バイオメディカル研究および蛋白質治療薬の常なる難問であった。カチオン性ペプチドおよび蛋白質を用いる送達は20年間以上広く研究されて来たが、一方、血清蛋白質に対する感受性、抗体による中和、細胞外および細胞内プロテアーゼによる分解、および内在化後の不良なエンドソーム脱出が、この手法を用いる蛋白質送達応用の範囲を限定して来た。
本例は、カチオン性リポソームとのアニオン性蛋白質複合体化を用いる蛋白質送達のための一般的な戦略を実証している。この方法を用いて、多様な蛋白質クラス(Creチロシンリコンビナーゼ、TALE転写活性化因子、およびCas9ヌクレアーゼ、ニッカーゼ、および転写活性化因子を包含する)(図27(A))を、培養細胞株、幹細胞コロニー、およびマウス内耳の治療に関係するインビボ部位に送達した。記載される手法は高度に効率的であり、細胞培養においては確立された核酸トランスフェクション法と比肩する改変比率を生成し、生体マウスの内耳有毛細胞集団においてそれぞれ90%および20%までのCreリコンビナーゼおよびCas9によって媒介されるゲノム改変比率を可能にする(図32(C)~(D))。これらの結果は、核酸とそれらを複合体化することによって、他の核酸結合蛋白質(細胞運命の治療に関係する変化を誘導する転写因子を包含する)を効率的に送達するためにカチオン性脂質を用いることが可能であり得るということをもまた示唆している。
カチオン性脂質に基づくアニオン性蛋白質送達は、強力なカチオン性蛋白質送達融合パートナー(+36)GFPを、エンドサイトーシスされた蛋白質の量あたり9,800倍まで凌ぎ、処置された細胞のより効率的な改変を蛋白質の数桁低い用量によって誘導する(図28(C)34)。Cas9ヌクレアーゼ送達については、この手法は、従来型のプラスミドトランスフェクションよりも>10倍特異的なゲノム改変をもまたもたらす(図31(B)~(D))。これは、DNA送達法と比較して、各ゲノムが暴露されるCas9活性の一過的なウインドウが原因である可能性が高く、以前の報告と一致している51
記載されている手法は実装することが単純であり、精製された送達可能な蛋白質とポピュラーな市販の核酸トランスフェクション試薬の使用とを要求するのみである(図27(B))。所与の蛋白質をこの手法を適用可能にすることは、(-30)GFPなどの高度にアニオン性のパートナーへの単純な翻訳融合を要求し(図27(A))、普通の翻訳融合タグ(VP64活性化ドメインおよび3×FLAGアフィニティータグを包含する)でさえも有効である(図28(F)および図33(C))。ある種の場合では、Cas9蛋白質のように、相手の核酸(この場合ではsgRNA)との予備的な複合体化が充分である(図30(A))。なぜなら、部分的に暴露された結合した核酸は、カチオン性脂質との複合体化を媒介するために充分なアニオン性電荷を提供する可能性が高いからである。
他のグループは、DNAまたはmRNA形態でのCas9発現構築物のインビボ送達を報告して来た52、53。本例は、蛋白質送達がインビボゲノム編集への現実的手法であるということを実証している。
表1.EMX、VEGF、およびCLTA内の部位をターゲット化するCas9:sgRNAのオンターゲットおよび公知オフターゲット基質。EMX、VEGF、およびCLTAのゲノムオンターゲットおよびオフターゲット部位のリストが示されており、オンターゲット配列からの変異は小文字かつ太字で示されている。PAMは下線で示されている。
表2.EMX、CLTA、およびVEGFオンターゲット部位ならびに11個の既知のオフターゲット部位の、インデル頻度、P値、およびオンターゲット:オフターゲット切断特異性比。CLTA部位:合計:合計の配列カウント数。最初の10,000個の配列のみをオンターゲット部位配列については分析した。改変:パーセンテージとしての、合計の配列数によって除算されたインデル数。可能性ある改変の上限を、インデルが観察されなかった部位について計算した。これは、1つ未満のインデルがあると仮定し、それから合計の配列カウントによって除算して上限の改変パーセンテージに至ること、または理論上の検出限界(1/49,500。上の結果参照)を採ることによった(より大きいどちらかの値)。P値:モック処置、Cas9プラスミドトランスフェクション、およびリポソームCas9蛋白質:sgRNA送達について、P値は、両側のフィッシャーの正確検定を用いて、各CLTAをターゲット化された処置サンプル(DNAトランスフェクションまたは蛋白質:sgRNA送達いずれか)対Cas9蛋白質およびEGFPをターゲット化するsgRNAによって処置したコントロールサンプル(モック処置)の間で計算した。オン:オフ特異性は、各部位についてのオンターゲット対オフターゲットゲノム改変頻度の比である。EMX部位は、EMXターゲット部位に応用されたCLTA分析の実験および分析法を示している。VEGF部位は、VEGFターゲット部位に応用されたCLTA分析の実験および分析法を示している。インデルの合計数を決定するために、かつ本文の図31において、図41についてもまたオンターゲット:オフターゲット比を計算するために、モック処置コントロールのインデル数を、プラスミドトランスフェクションおよび蛋白質:sgRNA送達インデル数両方から引いた。
均等物および範囲
当業者は、本明細書に記載される特定の態様の多くの均等物を認識するか、または慣例の実験法のみを用いて確かめる能力があるであろう。本発明の範囲は上の記載に限定されることを意図されておらず、むしろ添付の請求項に示される通りとする。
当業者は、本明細書に記載される本発明に従う特定の態様の多くの均等物を認識するか、または慣例の実験法のみを用いて確かめる能力があるであろう。本発明の範囲は上の記載に限定されることを意図されておらず、むしろ添付の請求項に示される通りとする。
請求項において、逆に示されないかまたは文脈から別様に明白でない限り、「a」、「an」、および「the」などの冠詞は1つまたは1つよりも多くを意味し得る。逆に示されないかまたは文脈から別様に明白でない限り、群の1つまたは2つ以上のメンバー間に「または」を包含する請求項または記載は、群のメンバーの1つ、1つよりも多く、または全てが所与の産物またはプロセスにおいて存在する、使用される、または別様に関係する場合に満たされていると見なされる。本発明は、群の厳密に1つのメンバーが所与の産物またはプロセスにおいて存在する、使用される、または別様に関係する態様を包含する。本発明は、群のメンバーの1つよりも多くまたは全てが所与の産物またはプロセスにおいて存在する、使用される、または別様に関係する態様を包含する。さらにその上に、本発明は、列挙された請求項の1つまたは2つ以上からの1つまたは2つ以上の限定、要素、節、説明用語などが別の請求項中に導入される全てのバリエーション、組み合わせ、および入れ替えを包含するということが理解されるべきである。例えば、別の請求項に依存するいずれかの請求項が改変されて、同じ基礎請求項に依存するいずれかの他の請求項中に見いだされる1つまたは2つ以上の限定を包含し得る。さらにその上に、請求項が組成物を記述しているところでは、別様に示されない限り、または矛盾もしくは非一貫性が起因するであろうということが当業者に明白でない限り、本明細書において開示される目的のいずれかのために組成物を用いる方法が包含され、本明細書において開示される作る方法または当分野において公知の他の方法のいずれかに従って組成物を作る方法が包含されるということが理解されるべきである。
要素がリストとして(例えばマーカッシュ群フォーマットで)提出されているところでは、要素の各下位群もまた開示され、いずれかの要素(単数または複数)が群から取り除かれ得るということは理解されるべきである。一般的に、本発明または本発明の側面が特定の要素、特徴などを含むと言われるところでは、本発明のある種の態様または本発明の側面がかかる要素、特徴などからなるかまたは本質的になるということが理解されるべきである。単純の目的のために、それらの態様は本明細書においては一々具体的に示されなかった。用語「含む」は開放的であることが意図されており、追加の要素またはステップの包含を許可するということもまた注意される。
範囲が与えられているところでは、エンドポイントは包含される。さらにその上に、別様に示されないかまたは文脈および/もしくは当業者の理解から別様に明白でない限り、範囲として表現されている値は、本発明の異なる態様において、記された範囲内のいずれかの特定の値または部分範囲を、文脈が明確に別様に述べていない限り、範囲の下限の単位の1/10までとり得るいうことが理解されるべきである。
加えて、先行技術に属する本発明のいずれかの特定の態様が、請求項のいずれかの1つまたは2つ以上からはっきりと除外され得るということは、理解されるべきである。かかる態様は当業者に公知であると思われるので、それらは除外が本明細書にはっきりと示されていない場合であっても除外され得る。本発明の組成物のいずれかの特定の態様(例えば、いずれかの超荷電蛋白質、いずれかの核酸、生成のいずれかの方法、使用のいずれかの方法など)は、先行技術の存在に関連するかどうかにかかわらず、いずれかの理由でいずれかの1つまたは2つ以上の請求項から除外され得る。
全ての引用されたソース(例えば、本明細書に引用された参照、公開、データベース、データベースエントリー、および技術)は、引用においてわざわざ記されない場合であっても参照によって本願に組み込まれる。引用されたソースと本願との相反する記の場合では、本願の記がコントロールするものとする。

Claims (92)

  1. 機能的なエフェクター蛋白質と結びついた超荷電蛋白質を含む組成物であって、超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも大きくかつ充分量である正の総電荷を有し、細胞内への透過のために処方される、前記組成物。
  2. 機能的なエフェクター蛋白質がヌクレアーゼである、請求項1に記載の組成物。
  3. ヌクレアーゼが、RNAによってプログラミング可能なヌクレアーゼである、請求項2に記載の組成物。
  4. ヌクレアーゼがTALEヌクレアーゼ、Cas9ヌクレアーゼ、またはジンクフィンガーヌクレアーゼである、請求項3に記載の組成物。
  5. ヌクレアーゼが核酸配列に特異的に結合して切断する、請求項2~4のいずれか一項に記載の組成物。
  6. 核酸配列が、疾患または障害と結びついた遺伝子またはアレル内に含まれる、請求項5に記載の組成物。
  7. 組成物が、ヌクレアーゼによって結合および切断される核酸配列と同一のまたは相同な配列を含む核酸分子をさらに含む、請求項5または6に記載の組成物。
  8. 核酸配列が、治療ターゲットである遺伝子内に含まれる配列である、請求項5~7のいずれか一項に記載の組成物。
  9. 遺伝子が、細胞運命をコントロールする遺伝子である、請求項8に記載の組成物。
  10. 遺伝子が、褐色脂肪細胞の細胞運命に向かう細胞プログラミングを誘導または阻害する遺伝子である、請求項9に記載の組成物。
  11. 遺伝子がPRDM16またはPPARγである、請求項9または10に記載の組成物。
  12. 機能的なエフェクター蛋白質が転写因子である、請求項1に記載の組成物。
  13. 機能的なエフェクター蛋白質がTALE転写活性化因子または抑制因子である、請求項1に記載の組成物。
  14. 転写因子、転写活性化因子、または転写抑制因子が遺伝子に特異的に結合して活性化または抑制する、請求項12または13に記載の組成物。
  15. 遺伝子が治療ターゲットである、請求項14に記載の組成物。
  16. 機能的なエフェクター蛋白質がTALEエフェクターである、請求項1に記載の組成物。
  17. 超荷電蛋白質が共有結合を介して機能的なエフェクター蛋白質と結びつき、それゆえに融合蛋白質を形成する、請求項1~16のいずれか一項に記載の組成物。
  18. 超荷電蛋白質がリンカーを介して機能的なエフェクター蛋白質と結びつく、請求項1~17のいずれか一項に記載の組成物。
  19. リンカーが、切断可能なリンカーである、請求項18に記載の組成物。
  20. リンカーが、UVによって切断可能なリンカーまたはリソソーム酵素によって切断されるリンカーである、請求項19に記載の組成物。
  21. 超荷電蛋白質が非共有結合的な相互作用を介して機能的なエフェクター蛋白質と結びつき、それゆえに複合体を形成する、請求項1~16のいずれか一項に記載の組成物。
  22. 超荷電蛋白質が正味の正の総電荷を有する、請求項21に記載の組成物。
  23. 正味の正の総電荷が約+5である、請求項21に記載の組成物。
  24. 正味の正の総電荷が約+10である、請求項21に記載の組成物。
  25. 正味の正の総電荷が約+15である、請求項21に記載の組成物。
  26. 正味の正の総電荷が約+20である、請求項21に記載の組成物。
  27. 正味の正の総電荷が約+25である、請求項21に記載の組成物。
  28. 正味の正の総電荷が約+30である、請求項21に記載の組成物。
  29. 正味の正の総電荷が約+35である、請求項21に記載の組成物。
  30. 正味の正の総電荷が約+40である、請求項21に記載の組成物。
  31. 超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて多く正に荷電する、請求項1~30のいずれか一項に記載の組成物。
  32. 対応する未改変蛋白質が天然に存在する蛋白質である、請求項31に記載の組成物。
  33. 超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて少なくとも+5多く正に荷電する、請求項1~32のいずれか一項に記載の組成物。
  34. 超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて少なくとも+10多く正に荷電する、請求項1~32のいずれか一項に記載の組成物。
  35. 超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて少なくとも+15多く正に荷電する、請求項1~32のいずれか一項に記載の組成物。
  36. 超荷電蛋白質が、その対応する未改変蛋白質よりも生理pHにおいて少なくとも+5多く正に荷電する、請求項1~32のいずれか一項に記載の組成物。
  37. 超荷電蛋白質が蛍光蛋白質である、請求項1~36のいずれか一項に記載の組成物。
  38. 超荷電蛋白質が緑色蛍光蛋白質(GFP)である、請求項1~37のいずれか一項に記載の組成物。
  39. 超荷電蛋白質が超正荷電GFPである、請求項1~38のいずれか一項に記載の組成物。
  40. 超荷電蛋白質が、配列
    GGASKGERLFRGKVPILVELKGDVNGHKFSVRGKGKGDATRGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPKHMKRHDFFKSAMPKGYVQERTISFKKDGKYKTRAEVKFEGRTLVNRIKLKGRDFKEKGNILGHKLRYNFNSHKVYITADKRKNGIKAKFKIRHNVKDGSVQLADHYQQNTPIGRGPVLLPRNHYLSTRSKLSKDPKEKRDHMVLLEFVTAAGIKHGRDERYK(配列番号1)
    の少なくとも20個の連続したアミノ酸残基を含む超正荷電GFP(+36GFP)である、請求項1~39のいずれか一項に記載の組成物。
  41. 超荷電蛋白質が、配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むかまたはそれからなる、請求項40に記載の組成物。
  42. 組成物が医薬組成物である、請求項1~41のいずれか一項に記載の組成物。
  43. 組成物が薬学的に許容可能な賦形剤を含む、請求項42に記載の医薬組成物。
  44. 組成物が対象への投与のために処方され、対象の少なくとも1つの細胞への送達に有効な量で超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質を含む、請求項42または43に記載の医薬組成物。
  45. 組成物が、対象への投与後に測定可能な治療効果を誘導することに有効な量で超荷電蛋白質および機能的なエフェクター蛋白質を含む、請求項42~44のいずれか一項に記載の医薬組成物。
  46. 疾患、障害、または状態の1つもしくは2つ以上の症状を患いやすいか、それを患っているか、またはそれを示す対象を提供すること;および
    請求項1~41のいずれか一項に記載の組成物または請求項42~45のいずれか一項に記載の医薬組成物を対象に投与し、その結果、少なくとも1つの症状が回復すること
    を含む、方法。
  47. 投与するステップが、機能的なエフェクター蛋白質が対象の細胞に透過するために充分な条件で実施される、請求項46に記載の方法。
  48. 疾患、障害、または状態が、mRNA、蛋白質、またはその組み合わせの異常に高まったレベルと結びついている、請求項46または47に記載の方法。
  49. 組成物が、病原性のRNAもしくは蛋白質をコードする遺伝子または疾患細胞または組織において異常に高いレベルで発現されるRNAもしくは蛋白質をコードする遺伝子に、特異的に結合して切断するヌクレアーゼを含む、請求項46~48のいずれか一項に記載の方法。
  50. 投与するステップが、経口、静脈内、筋内、動脈内、皮下、脳室内、局所、吸入、および粘膜送達からなる群から選択される投与経路を含む、請求項46~49のいずれか一項に記載の方法。
  51. 機能的なエフェクター蛋白質が細胞に入るための好適な条件で、請求項1~41のいずれか一項に記載の組成物または請求項42~45のいずれか一項に記載の医薬組成物と細胞を接触させることを含み、それによって細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を導入する、細胞内に機能的なエフェクター蛋白質を導入する方法。
  52. 機能的なエフェクター蛋白質が細胞に透過したことを確認することをさらに含む、請求項51に記載の方法。
  53. 細胞が対象内に含まれ、接触がインビボである、請求項51または52に記載の方法。
  54. 対象が、遺伝子の異常な発現レベルと結びついた障害を有するかまたは発症するリスクがあると診断され、機能的なエフェクター蛋白質が遺伝子の発現レベルを調節する、請求項53に記載の方法。
  55. 遺伝子の発現のレベルの変化を検出することまたは対象の治療応答を検出することをさらに含む、請求項54に記載の方法。
  56. 細胞が体細胞である、請求項51~55のいずれか一項に記載の方法。
  57. 細胞が、望まれる細胞運命への細胞のプログラミングを誘導するために充分な量、時間、および条件で組成物または医薬組成物と接触させられる、請求項51~56のいずれか一項に記載の方法。
  58. 細胞補充治療手法にプログラミングされた細胞を用いることをさらに含む、請求項57に記載の方法。
  59. 細胞が疾患と結びついたゲノムアレルを持っている細胞であり、機能的なエフェクター蛋白質がアレルを特異的にターゲット化するヌクレアーゼである、請求項51~58のいずれか一項に記載の方法。
  60. 細胞がエクスビボで接触させられ、ヌクレアーゼによる望まれないアレルの成功したターゲット化後に対象に再投与される、請求項59に記載の方法。
  61. 請求項1~41のいずれか一項に記載の組成物または請求項42~45のいずれか一項に記載の医薬組成物を含む、キット。
  62. 請求項46~60のいずれか一項に記載の方法を実行するためのキット。
  63. Cas9蛋白質およびカチオン性脂質を含む組成物であって、Cas9蛋白質がgRNAと結びつき、組成物が細胞の内部にCas9蛋白質を送達することができる、前記組成物。
  64. 組成物が、細胞の集団に投与されたときに低い毒性を示す、請求項63に記載の組成物。
  65. 細胞の少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%が、組成物の投与後に生存可能である、請求項63または64に記載の組成物。
  66. カチオン性脂質が、Lipofectamine(登録商標)2000、Lipofectamine(登録商標)3000、Lipofectamine(登録商標)RNAiMAX、およびLipofectamine(登録商標)LTXからなる群から選択される、請求項63~65のいずれか一項に記載の組成物。
  67. Cas9蛋白質が、野生型Cas9蛋白質もしくはそのバリアント、Cas9ニッカーゼ、またはヌクレアーゼ不活性型Cas9(dCas9)もしくはそのバリアントを含む、請求項63~66のいずれか一項に記載の組成物。
  68. dCas9が転写活性化因子または転写抑制因子に融合する、請求項67に記載の組成物。
  69. 転写活性化因子がVP16、VP64、およびp65からなる群から選択されるか、または転写抑制因子がKRAB蛋白質もしくはSID蛋白質である、請求項68に記載の組成物。
  70. dCas9がヌクレアーゼドメインに融合する、請求項67に記載の組成物。
  71. ヌクレアーゼドメインがFokIヌクレアーゼドメインを含む、請求項70に記載の組成物。
  72. dCas9がリコンビナーゼ触媒ドメインに融合する、請求項67に記載の組成物。
  73. リコンビナーゼ触媒ドメインがHinリコンビナーゼ触媒ドメイン、Ginリコンビナーゼ触媒ドメイン、またはTn3リコンビナーゼ触媒ドメインを含む、請求項72に記載の組成物。
  74. dCas9がデアミナーゼに融合する、請求項67に記載の組成物。
  75. デアミナーゼが、APOBEC1、AID、およびACF1/ASEデアミナーゼからなる群から選択されるシチジンデアミナーゼを含むか、または、デアミナーゼが、ADATファミリーデアミナーゼを任意で含むアデノシンデアミナーゼを含む、請求項74に記載の組成物。
  76. dCas9がエピジェネティック修飾因子に融合する、請求項67に記載の組成物。
  77. エピジェネティック修飾因子が、ヒストン脱メチル化酵素、ヒストンメチルトランスフェラーゼ、ヒドロキシラーゼ、ヒストン脱アセチル化酵素、およびヒストンアセチルトランスフェラーゼからなる群から選択される、請求項76に記載の組成物。
  78. エピジェネティック修飾因子が、LSD1ヒストン脱メチル化酵素またはTET1ヒドロキシラーゼを含む、請求項77に記載の組成物。
  79. Cas9蛋白質が、正味の負電荷を有する超荷電蛋白質と結びつき、結びつきは正味の負電荷を有し、任意で結びつきは共有結合的な結びつきである、請求項67に記載の組成物。
  80. 超荷電蛋白質が蛍光蛋白質であり、任意で超荷電蛋白質が超負荷電GFPである、請求項79に記載の組成物。
  81. エフェクター蛋白質およびカチオン性脂質、カチオン性ポリマー、またはカチオン性脂質およびカチオン性ポリマーの両方を含む組成物であって、エフェクター蛋白質が正味の負電荷を有する超荷電蛋白質と結びつき、結びつきが正味の負電荷を有し、組成物が細胞の内部にエフェクター蛋白質を送達することができる、前記組成物。
  82. 組成物が、細胞の集団に投与されたときに低い毒性を示す、請求項81に記載の組成物。
  83. 細胞の少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または少なくとも99%が、組成物の投与後に生存可能である、請求項81または82に記載の組成物。
  84. カチオン性脂質が、Lipofectamine(登録商標)2000、Lipofectamine(登録商標)3000、Lipofectamine(登録商標)RNAiMAX、およびLipofectamine(登録商標)LTXからなる群から選択される、請求項81~83のいずれか一項に記載の組成物。
  85. 超荷電蛋白質が蛍光蛋白質であり、任意で超荷電蛋白質が超負荷電GFPである、請求項81~84のいずれか一項に記載の組成物。
  86. エフェクター蛋白質がリコンビナーゼである、請求項81~85のいずれか一項に記載の組成物。
  87. リコンビナーゼがCreリコンビナーゼである、請求項86に記載の組成物。
  88. エフェクター蛋白質がTALE蛋白質を含む、請求項81~87のいずれか一項に記載の組成物。
  89. TALE蛋白質がVP64転写活性化因子を含む、請求項88に記載の組成物。
  90. 組成物が医薬組成物である、請求項81~89のいずれか一項に記載の組成物。
  91. その必要がある対象に請求項90に記載の医薬組成物を投与することを含む、方法。
  92. 細胞内にCas9蛋白質を導入する方法であって、Cas9蛋白質が細胞内に入るための好適な条件で請求項81~90のいずれか一項に記載の組成物と細胞を接触させることを含み、それによって細胞内にCas9蛋白質を導入する、前記方法。
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Families Citing this family (217)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2011348204B2 (en) 2010-12-22 2017-03-02 President And Fellows Of Harvard College Continuous directed evolution
EP3613852A3 (en) 2011-07-22 2020-04-22 President and Fellows of Harvard College Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity
WO2013119602A1 (en) 2012-02-06 2013-08-15 President And Fellows Of Harvard College Arrdc1-mediated microvesicles (armms) and uses thereof
WO2013163628A2 (en) 2012-04-27 2013-10-31 Duke University Genetic correction of mutated genes
MX2015007550A (es) 2012-12-12 2017-02-02 Broad Inst Inc Suministro, modificación y optimización de sistemas, métodos y composiciones para la manipulación de secuencias y aplicaciones terapéuticas.
EP2931892B1 (en) 2012-12-12 2018-09-12 The Broad Institute, Inc. Methods, models, systems, and apparatus for identifying target sequences for cas enzymes or crispr-cas systems for target sequences and conveying results thereof
WO2014113493A1 (en) 2013-01-16 2014-07-24 Emory University Cas9-nucleic acid complexes and uses related thereto
WO2014204727A1 (en) 2013-06-17 2014-12-24 The Broad Institute Inc. Functional genomics using crispr-cas systems, compositions methods, screens and applications thereof
EP3011034B1 (en) 2013-06-17 2019-08-07 The Broad Institute, Inc. Delivery, use and therapeutic applications of the crispr-cas systems and compositions for targeting disorders and diseases using viral components
AU2014281026B2 (en) 2013-06-17 2020-05-28 Massachusetts Institute Of Technology Delivery, engineering and optimization of tandem guide systems, methods and compositions for sequence manipulation
RU2716420C2 (ru) 2013-06-17 2020-03-11 Те Брод Инститьют Инк. Доставка и применение систем crispr-cas, векторов и композиций для целенаправленного воздействия и терапии в печени
CN105492611A (zh) 2013-06-17 2016-04-13 布罗德研究所有限公司 用于序列操纵的优化的crispr-cas双切口酶系统、方法以及组合物
US9163284B2 (en) 2013-08-09 2015-10-20 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease
US9359599B2 (en) 2013-08-22 2016-06-07 President And Fellows Of Harvard College Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof
GB201315321D0 (en) * 2013-08-28 2013-10-09 Koninklijke Nederlandse Akademie Van Wetenschappen Transduction Buffer
US9228207B2 (en) 2013-09-06 2016-01-05 President And Fellows Of Harvard College Switchable gRNAs comprising aptamers
US9737604B2 (en) 2013-09-06 2017-08-22 President And Fellows Of Harvard College Use of cationic lipids to deliver CAS9
US9322037B2 (en) 2013-09-06 2016-04-26 President And Fellows Of Harvard College Cas9-FokI fusion proteins and uses thereof
AU2014346559B2 (en) 2013-11-07 2020-07-09 Editas Medicine,Inc. CRISPR-related methods and compositions with governing gRNAs
MX2016007328A (es) 2013-12-12 2017-07-19 Broad Inst Inc Suministro, uso y aplicaciones terapeuticas de sistemas y composiciones crispr-cas para edicion del genoma.
AU2014362248A1 (en) 2013-12-12 2016-06-16 Massachusetts Institute Of Technology Compositions and methods of use of CRISPR-Cas systems in nucleotide repeat disorders
WO2015089364A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Crystal structure of a crispr-cas system, and uses thereof
US20150166982A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 President And Fellows Of Harvard College Methods for correcting pi3k point mutations
WO2015089486A2 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Systems, methods and compositions for sequence manipulation with optimized functional crispr-cas systems
EP3957735A1 (en) 2014-03-05 2022-02-23 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating usher syndrome and retinitis pigmentosa
EP3613854A1 (en) 2014-03-05 2020-02-26 National University Corporation Kobe University Genomic sequence modification method for specifically converting nucleic acid bases of targeted dna sequence, and molecular complex for use in same
WO2015138510A1 (en) 2014-03-10 2015-09-17 Editas Medicine., Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating leber's congenital amaurosis 10 (lca10)
US11339437B2 (en) 2014-03-10 2022-05-24 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for treating CEP290-associated disease
US11141493B2 (en) 2014-03-10 2021-10-12 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for treating CEP290-associated disease
EP3981876A1 (en) 2014-03-26 2022-04-13 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating sickle cell disease
US10077453B2 (en) 2014-07-30 2018-09-18 President And Fellows Of Harvard College CAS9 proteins including ligand-dependent inteins
CA2957800A1 (en) 2014-09-07 2016-03-10 Selecta Biosciences, Inc. Methods and compositions for attenuating anti-viral transfer vector immune responses
CN107002078A (zh) * 2014-10-09 2017-08-01 生命技术公司 Crispr寡核苷酸和基因剪辑
CA2964234A1 (en) * 2014-10-10 2016-04-14 Massachusetts Eye And Ear Infirmary Efficient delivery of therapeutic molecules in vitro and in vivo
CN107208086A (zh) * 2014-10-17 2017-09-26 霍华德休斯医学研究所 基因组探针
US10920208B2 (en) 2014-10-22 2021-02-16 President And Fellows Of Harvard College Evolution of proteases
WO2016065341A1 (en) 2014-10-24 2016-04-28 Avectas Limited Delivery across cell plasma membranes
EP3212773B1 (en) * 2014-10-29 2021-09-15 Massachusetts Eye and Ear Infirmary Efficient delivery of therapeutic molecules to cells of the inner ear
US9816080B2 (en) 2014-10-31 2017-11-14 President And Fellows Of Harvard College Delivery of CAS9 via ARRDC1-mediated microvesicles (ARMMs)
EA038321B1 (ru) 2014-11-06 2021-08-09 Е.И. Дюпон Де Немур Энд Компани Опосредуемая пептидом доставка направляемой рнк эндонуклеазы в клетки
EP3227447B1 (en) 2014-12-03 2024-04-24 Agilent Technologies, Inc. Guide rna with chemical modifications
EP3985115A1 (en) 2014-12-12 2022-04-20 The Broad Institute, Inc. Protected guide rnas (pgrnas)
WO2016094880A1 (en) * 2014-12-12 2016-06-16 The Broad Institute Inc. Delivery, use and therapeutic applications of crispr systems and compositions for genome editing as to hematopoietic stem cells (hscs)
US11046952B2 (en) * 2015-03-16 2021-06-29 The Broad Institute, Inc. Encoding of DNA vector identity via iterative hybridization detection of a barcode transcript
JP6873911B2 (ja) 2015-04-06 2021-05-19 ザ ボード オブ トラスティーズ オブ ザ レランド スタンフォード ジュニア ユニバーシティー 初代細胞において標的核酸の遺伝子調節を誘導するためにインビトロで行う方法
WO2016168631A1 (en) 2015-04-17 2016-10-20 President And Fellows Of Harvard College Vector-based mutagenesis system
CN107690480B (zh) 2015-04-24 2022-03-22 爱迪塔斯医药公司 Cas9分子/指导rna分子复合物的评价
CA3000155A1 (en) * 2015-05-29 2016-12-08 Agenovir Corporation Compositions and methods for cell targeted hpv treatment
US10117911B2 (en) 2015-05-29 2018-11-06 Agenovir Corporation Compositions and methods to treat herpes simplex virus infections
IL298524B2 (en) 2015-06-12 2024-03-01 Lonza Walkersville Inc Methods for nuclear reprogramming using synthetic transcription factors
AU2016278959A1 (en) 2015-06-17 2018-01-18 The Uab Research Foundation CRISPR/Cas9 complex for introducing a functional polypeptide into cells of blood cell lineage
US11643668B2 (en) 2015-06-17 2023-05-09 The Uab Research Foundation CRISPR/Cas9 complex for genomic editing
WO2016205759A1 (en) 2015-06-18 2016-12-22 The Broad Institute Inc. Engineering and optimization of systems, methods, enzymes and guide scaffolds of cas9 orthologs and variants for sequence manipulation
RU2752834C2 (ru) 2015-06-18 2021-08-09 Те Брод Инститьют, Инк. Мутации фермента crispr, уменьшающие нецелевые эффекты
US10392674B2 (en) 2015-07-22 2019-08-27 President And Fellows Of Harvard College Evolution of site-specific recombinases
US11524983B2 (en) 2015-07-23 2022-12-13 President And Fellows Of Harvard College Evolution of Bt toxins
WO2017019895A1 (en) 2015-07-30 2017-02-02 President And Fellows Of Harvard College Evolution of talens
ES2938623T3 (es) 2015-09-09 2023-04-13 Univ Kobe Nat Univ Corp Método para convertir una secuencia del genoma de una bacteria gram-positiva mediante una conversión específica de una base de ácido nucleico de una secuencia de ADN seleccionada como diana y el complejo molecular utilizado en el mismo
JP6940262B2 (ja) * 2015-09-09 2021-09-22 株式会社日本触媒 ゲノム配列が特異的に変換された遺伝子改変クロストリジウム・サッカロパーブチルアセトニカム種微生物、その製造方法およびその用途
EP3348636B1 (en) * 2015-09-09 2021-12-01 National University Corporation Kobe University Method for modifying genome sequence that specifically converts nucleobase of targeted dna sequence, and molecular complex used in said method
CN105177110A (zh) * 2015-09-11 2015-12-23 中国科学院微生物研究所 核酸的检测方法
JP7014721B2 (ja) 2015-09-18 2022-02-01 ディーエヌエーアールエックス インビボでの核酸発現のためのシステム及び方法
EP3366777A4 (en) 2015-10-06 2019-03-20 Institute for Basic Science METHOD FOR THE HIGHLY EFFICIENT PRODUCTION OF GENOMODIFIED PLANTS FROM PLANT PROTOPLASTS
US11970710B2 (en) 2015-10-13 2024-04-30 Duke University Genome engineering with Type I CRISPR systems in eukaryotic cells
EP3362102A1 (en) 2015-10-14 2018-08-22 Life Technologies Corporation Ribonucleoprotein transfection agents
IL294014B1 (en) 2015-10-23 2024-03-01 Harvard College Nucleobase editors and their uses
WO2017081288A1 (en) 2015-11-11 2017-05-18 Lonza Ltd Crispr-associated (cas) proteins with reduced immunogenicity
KR102061438B1 (ko) 2015-11-27 2019-12-31 고쿠리츠다이가쿠호진 고베다이가쿠 표적화 dna 서열 중의 핵산 염기가 특이적으로 전환되어 있는 단자엽식물 게놈 서열을 전환시키는 방법, 및 그것에 사용되는 분자 복합체
CA3009715A1 (en) * 2015-12-30 2017-07-06 Avectas Limited Vector-free delivery of gene editing proteins and compositions to cells and tissues
US11427837B2 (en) * 2016-01-12 2022-08-30 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for enhanced genome editing
CA3011458A1 (en) * 2016-01-14 2017-07-20 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Genome editing for treating glioblastoma
EP3411056A4 (en) * 2016-02-02 2019-10-02 Sangamo Therapeutics, Inc. COMPOUNDS FOR NETWORKING DNA BINDING DOMAINS AND SPLITTING DOMAINS
CA3029735A1 (en) * 2016-03-15 2017-09-21 University Of Massachusetts Anti-crispr compounds and methods of use
WO2017165862A1 (en) 2016-03-25 2017-09-28 Editas Medicine, Inc. Systems and methods for treating alpha 1-antitrypsin (a1at) deficiency
WO2017205503A1 (en) 2016-05-24 2017-11-30 Indiana University Research And Technology Corporation Ku inhibitors and their use
ES2901215T3 (es) * 2016-05-27 2022-03-21 Aadigen Llc Péptidos y nanopartículas para la liberación intracelular de moléculas de edición del genoma
WO2017208247A1 (en) * 2016-06-02 2017-12-07 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Ltd. Assay for the removal of methyl-cytosine residues from dna
US10767175B2 (en) 2016-06-08 2020-09-08 Agilent Technologies, Inc. High specificity genome editing using chemically modified guide RNAs
EP3474849A4 (en) 2016-06-27 2020-07-29 The Broad Institute, Inc. COMPOSITIONS AND METHODS FOR DETECTION AND TREATMENT OF DIABETES
WO2018021855A1 (ko) * 2016-07-28 2018-02-01 기초과학연구원 Cas9 단백질 및 가이드 RNA를 포함하는 안질환 치료용 약학 조성물
AU2017305404B2 (en) 2016-08-02 2023-11-30 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for treating CEP290 associated disease
AU2017306676B2 (en) 2016-08-03 2024-02-22 President And Fellows Of Harvard College Adenosine nucleobase editors and uses thereof
CA3033327A1 (en) 2016-08-09 2018-02-15 President And Fellows Of Harvard College Programmable cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
KR101710026B1 (ko) 2016-08-10 2017-02-27 주식회사 무진메디 Cas9 단백질 및 가이드 RNA의 혼성체를 함유하는 나노 리포좀 전달체 조성물
US20200283743A1 (en) 2016-08-17 2020-09-10 The Broad Institute, Inc. Novel crispr enzymes and systems
WO2018035388A1 (en) 2016-08-17 2018-02-22 The Broad Institute, Inc. Novel crispr enzymes and systems
WO2018039438A1 (en) 2016-08-24 2018-03-01 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
CA3035910A1 (en) 2016-09-07 2018-03-15 Flagship Pioneering, Inc. Methods and compositions for modulating gene expression
US11730823B2 (en) 2016-10-03 2023-08-22 President And Fellows Of Harvard College Delivery of therapeutic RNAs via ARRDC1-mediated microvesicles
US11629170B2 (en) * 2016-10-12 2023-04-18 Feldan Bio Inc. Rationally-designed synthetic peptide shuttle agents for delivering polypeptide cargos from an extracellular space to the cytosol and/or nucleus of a target eukaryotic cell, uses thereof, methods and kits relating to same
CN110214180A (zh) 2016-10-14 2019-09-06 哈佛大学的校长及成员们 核碱基编辑器的aav递送
EP3535396A1 (en) 2016-11-01 2019-09-11 Novartis AG Methods and compositions for enhancing gene editing
AR110075A1 (es) 2016-11-14 2019-02-20 Inst Genetics & Developmental Biology Cas Un método para edición basal en plantas
WO2018093919A1 (en) * 2016-11-15 2018-05-24 City Of Hope Methods for intracellular delivery and enhanced gene targeting
WO2018119359A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 President And Fellows Of Harvard College Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection
GB2605925B (en) 2016-12-23 2023-02-22 Harvard College Gene editing of PCSK9
US11873496B2 (en) 2017-01-09 2024-01-16 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods of altering gene expression by perturbing transcription factor multimers that structure regulatory loops
US20180258418A1 (en) * 2017-01-17 2018-09-13 Institute For Basic Science Method of identifying genome-wide off-target sites of base editors by detecting single strand breaks in genomic dna
TW201839136A (zh) 2017-02-06 2018-11-01 瑞士商諾華公司 治療血色素異常症之組合物及方法
CN106978438B (zh) * 2017-02-27 2020-08-28 北京大北农生物技术有限公司 提高同源重组效率的方法
US11898179B2 (en) 2017-03-09 2024-02-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
KR20190123328A (ko) 2017-03-09 2019-10-31 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 암 백신
JP2020510439A (ja) 2017-03-10 2020-04-09 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シトシンからグアニンへの塩基編集因子
EP3596217A1 (en) 2017-03-14 2020-01-22 Editas Medicine, Inc. Systems and methods for the treatment of hemoglobinopathies
MX2019011272A (es) * 2017-03-22 2019-10-24 Novartis Ag Composiciones y metodos para inmunooncologia.
JP2020511521A (ja) 2017-03-23 2020-04-16 ディーエヌエーアールエックス in vivoでの核酸発現のためのシステム及び方法
KR20190130613A (ko) 2017-03-23 2019-11-22 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 핵산 프로그램가능한 dna 결합 단백질을 포함하는 핵염기 편집제
WO2018191750A2 (en) 2017-04-14 2018-10-18 The Broad Institute Inc. Novel delivery of large payloads
EP3622070A2 (en) 2017-05-10 2020-03-18 Editas Medicine, Inc. Crispr/rna-guided nuclease systems and methods
WO2018209320A1 (en) 2017-05-12 2018-11-15 President And Fellows Of Harvard College Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation
WO2018211990A1 (ja) * 2017-05-15 2018-11-22 国立研究開発法人産業技術総合研究所 固体支持体からタンパク質を細胞に送達する方法およびそのためのアレイ
JP7364472B2 (ja) * 2017-05-18 2023-10-18 ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド 標的化された核酸編集のための系、方法、及び組成物
JP2020521446A (ja) * 2017-05-25 2020-07-27 ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション 二部塩基エディター(bbe)構造およびii型−c−cas9ジンクフィンガー編集
KR102206676B1 (ko) * 2017-06-14 2021-01-26 한국과학기술원 비바이러스성 유전자편집 crispr 나노복합체 및 이의 제조방법
US20200362355A1 (en) 2017-06-15 2020-11-19 The Regents Of The University Of California Targeted non-viral dna insertions
US20200140896A1 (en) 2017-06-30 2020-05-07 Novartis Ag Methods for the treatment of disease with gene editing systems
US11447809B2 (en) 2017-07-06 2022-09-20 President And Fellows Of Harvard College Evolution of tRNA synthetases
WO2019023680A1 (en) 2017-07-28 2019-01-31 President And Fellows Of Harvard College METHODS AND COMPOSITIONS FOR EVOLUTION OF BASIC EDITORS USING PHAGE-ASSISTED CONTINUOUS EVOLUTION (PACE)
US11319532B2 (en) 2017-08-30 2022-05-03 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising Gam
CN111225975A (zh) * 2017-09-11 2020-06-02 加利福尼亚大学董事会 抗体介导的cas9向哺乳动物细胞的递送
WO2019056002A1 (en) 2017-09-18 2019-03-21 President And Fellows Of Harvard College CONTINUOUS EVOLUTION FOR STABILIZED PROTEINS
CN107557373A (zh) * 2017-09-19 2018-01-09 安徽大学 一种基于I‑B型CRISPR‑Cas系统基因cas3的基因编辑方法
CN107722125B (zh) * 2017-09-28 2021-05-07 中山大学 一种人工转录激活因子dCas9-TV及其编码基因与应用
BR112020007157A2 (pt) 2017-10-13 2020-09-24 Selecta Biosciences, Inc. métodos e composições para a atenuação de respostas de igm antivetor de transferência viral
US11795443B2 (en) 2017-10-16 2023-10-24 The Broad Institute, Inc. Uses of adenosine base editors
AU2018355587B2 (en) 2017-10-27 2023-02-02 The Regents Of The University Of California Targeted replacement of endogenous T cell receptors
US20210180053A1 (en) 2017-11-01 2021-06-17 Novartis Ag Synthetic rnas and methods of use
EP3710039A4 (en) 2017-11-13 2021-08-04 The Broad Institute, Inc. METHODS AND COMPOSITIONS FOR CANCER TREATMENT BY TARGETING THE CLEC2D-KLRB1 PATH
WO2019099943A1 (en) 2017-11-16 2019-05-23 Astrazeneca Ab Compositions and methods for improving the efficacy of cas9-based knock-in strategies
WO2019161251A1 (en) 2018-02-15 2019-08-22 The Broad Institute, Inc. Cell data recorders and uses thereof
CN112020554A (zh) * 2018-02-23 2020-12-01 先锋国际良种公司 新颖cas9直系同源物
EP3758682A4 (en) 2018-02-26 2021-12-15 Antolrx, Inc. TOLEROGENIC LIPOSOMES AND THEIR PROCEDURES FOR USE
WO2019168953A1 (en) 2018-02-27 2019-09-06 President And Fellows Of Harvard College Evolved cas9 variants and uses thereof
GB201803419D0 (en) * 2018-03-02 2018-04-18 Ucl Business Plc Complex for the delivery of cas9 proteins guide RNA to cells
US10968257B2 (en) 2018-04-03 2021-04-06 The Broad Institute, Inc. Target recognition motifs and uses thereof
AU2019247490A1 (en) 2018-04-06 2020-10-22 Children's Medical Center Corporation Compositions and methods for somatic cell reprogramming and modulating imprinting
WO2019204766A1 (en) 2018-04-19 2019-10-24 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for gene editing
US11913044B2 (en) 2018-06-14 2024-02-27 President And Fellows Of Harvard College Evolution of cytidine deaminases
US20210198642A1 (en) 2018-09-07 2021-07-01 Astrazeneca Ab Compositions and methods for improved nucleases
US20230031853A1 (en) * 2018-11-15 2023-02-02 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Compositions and methods for the cytoplasmic delivery of antibodies and other proteins
US20220282275A1 (en) 2018-11-15 2022-09-08 The Broad Institute, Inc. G-to-t base editors and uses thereof
CA3124395A1 (en) 2018-12-20 2020-06-25 Basf Plant Science Company Gmbh Native delivery of biomolecules into plant cells using ionic complexes with cell-penetrating peptides
US20230002745A1 (en) * 2019-01-23 2023-01-05 The Broad Institute, Inc. Supernegatively charged proteins and uses thereof
WO2020163306A1 (en) * 2019-02-04 2020-08-13 The Regents Of The University Of California Exercise-induced circulatory factors for amelioration of cognitive, neurological, and regenerative dysfunction during aging
US11946040B2 (en) 2019-02-04 2024-04-02 The General Hospital Corporation Adenine DNA base editor variants with reduced off-target RNA editing
WO2020181193A1 (en) 2019-03-06 2020-09-10 The Broad Institute, Inc. T:a to a:t base editing through adenosine methylation
WO2020181202A1 (en) 2019-03-06 2020-09-10 The Broad Institute, Inc. A:t to t:a base editing through adenine deamination and oxidation
WO2020181195A1 (en) 2019-03-06 2020-09-10 The Broad Institute, Inc. T:a to a:t base editing through adenine excision
WO2020181178A1 (en) 2019-03-06 2020-09-10 The Broad Institute, Inc. T:a to a:t base editing through thymine alkylation
WO2020181180A1 (en) 2019-03-06 2020-09-10 The Broad Institute, Inc. A:t to c:g base editors and uses thereof
WO2020191102A1 (en) 2019-03-18 2020-09-24 The Broad Institute, Inc. Type vii crispr proteins and systems
EP3942040A1 (en) 2019-03-19 2022-01-26 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for editing nucleotide sequences
EP3953470A1 (en) 2019-04-12 2022-02-16 Astrazeneca AB Compositions and methods for improved gene editing
US20220204975A1 (en) 2019-04-12 2022-06-30 President And Fellows Of Harvard College System for genome editing
EP3956349A1 (en) 2019-04-17 2022-02-23 The Broad Institute, Inc. Adenine base editors with reduced off-target effects
EP3963071A4 (en) * 2019-05-02 2023-01-11 Monsanto Technology LLC COMPOSITIONS AND METHODS FOR GENERATING DIVERSITY AT TARGETED NUCLEIC ACID SEQUENCES
EP3966323A4 (en) * 2019-05-06 2024-04-24 The Regents Of The University Of Michigan TARGETED THERAPY
WO2020236982A1 (en) 2019-05-20 2020-11-26 The Broad Institute, Inc. Aav delivery of nucleobase editors
EP3976802A1 (en) 2019-05-28 2022-04-06 Selecta Biosciences, Inc. Methods and compositions for attenuated anti-viral transfer vector immune response
CA3141900C (en) * 2019-05-29 2023-06-06 Encoded Therapeutics, Inc. Compositions and methods for selective gene regulation
EP4010474A1 (en) 2019-08-08 2022-06-15 The Broad Institute, Inc. Base editors with diversified targeting scope
WO2021030666A1 (en) 2019-08-15 2021-02-18 The Broad Institute, Inc. Base editing by transglycosylation
EP4041894A1 (en) 2019-09-23 2022-08-17 Omega Therapeutics, Inc. COMPOSITIONS AND METHODS FOR MODULATING HEPATOCYTE NUCLEAR FACTOR 4-ALPHA (HNF4a) GENE EXPRESSION
WO2021072328A1 (en) 2019-10-10 2021-04-15 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for prime editing rna
EP4041287A4 (en) * 2019-10-11 2023-11-29 University of Washington MODIFIED ENDONUCLEASES AND RELATED METHODS
US20230086199A1 (en) 2019-11-26 2023-03-23 The Broad Institute, Inc. Systems and methods for evaluating cas9-independent off-target editing of nucleic acids
US11859172B2 (en) 2020-01-02 2024-01-02 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Programmable and portable CRISPR-Cas transcriptional activation in bacteria
WO2021155065A1 (en) 2020-01-28 2021-08-05 The Broad Institute, Inc. Base editors, compositions, and methods for modifying the mitochondrial genome
EP4100519A2 (en) 2020-02-05 2022-12-14 The Broad Institute, Inc. Adenine base editors and uses thereof
US20230123669A1 (en) 2020-02-05 2023-04-20 The Broad Institute, Inc. Base editor predictive algorithm and method of use
US20230108687A1 (en) 2020-02-05 2023-04-06 The Broad Institute, Inc. Gene editing methods for treating spinal muscular atrophy
US20230127008A1 (en) 2020-03-11 2023-04-27 The Broad Institute, Inc. Stat3-targeted base editor therapeutics for the treatment of melanoma and other cancers
JP2023517992A (ja) 2020-03-12 2023-04-27 インスティチュート フォー ベーシック サイエンス ゲノム配列変異を有する細胞死滅誘導用組成物及び該組成物を用いた細胞死滅誘導方法
WO2021222318A1 (en) 2020-04-28 2021-11-04 The Broad Institute, Inc. Targeted base editing of the ush2a gene
WO2021224633A1 (en) 2020-05-06 2021-11-11 Orchard Therapeutics (Europe) Limited Treatment for neurodegenerative diseases
MX2022014008A (es) 2020-05-08 2023-02-09 Broad Inst Inc Métodos y composiciones para la edición simultánea de ambas cadenas de una secuencia de nucleótidos de doble cadena objetivo.
KR20240011120A (ko) 2020-12-22 2024-01-25 크로마 메디슨, 인크. 후성유전학적 편집을 위한 조성물 및 방법
EP4274894A2 (en) 2021-01-11 2023-11-15 The Broad Institute, Inc. Prime editor variants, constructs, and methods for enhancing prime editing efficiency and precision
CN112843222B (zh) * 2021-01-21 2023-01-31 暨南大学 Ankrd22蛋白在制备治疗或延缓自身免疫性疾病的产品中的应用
WO2022204543A1 (en) * 2021-03-25 2022-09-29 The Regents Of The University Of California Methods and materials for treating huntington's disease
EP4095265A1 (en) * 2021-05-26 2022-11-30 Université Paris-Saclay Detection of kdm1a loss of activity for diagnosing endocrine disorders
WO2022248506A1 (en) * 2021-05-26 2022-12-01 Universite Paris-Saclay Detection of kdm1a loss of activity for diagnosing endocrine disorders
CN117396602A (zh) 2021-05-27 2024-01-12 阿斯利康(瑞典)有限公司 具有增强的稳定性的cas9效应蛋白
WO2022261509A1 (en) 2021-06-11 2022-12-15 The Broad Institute, Inc. Improved cytosine to guanine base editors
CN113343589B (zh) * 2021-06-30 2022-07-26 西南石油大学 一种基于遗传-随机常数的基因表达式编程的酸性天然气水合物生成条件预测方法
EP4377459A2 (en) 2021-07-30 2024-06-05 Tune Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating expression of frataxin (fxn)
WO2023010135A1 (en) 2021-07-30 2023-02-02 Tune Therapeutics, Inc. Compositions and methods for modulating expression of methyl-cpg binding protein 2 (mecp2)
AU2022325166A1 (en) 2021-08-06 2024-02-08 President And Fellows Of Harvard College Improved prime editors and methods of use
CA3230927A1 (en) 2021-09-10 2023-03-16 Agilent Technologies, Inc. Guide rnas with chemical modification for prime editing
WO2023052508A2 (en) 2021-09-30 2023-04-06 Astrazeneca Ab Use of inhibitors to increase efficiency of crispr/cas insertions
US20230141563A1 (en) 2021-10-12 2023-05-11 Selecta Biosciences, Inc. Methods and compositions for attenuating anti-viral transfer vector igm responses
WO2023076898A1 (en) 2021-10-25 2023-05-04 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for editing a genome with prime editing and a recombinase
WO2023077148A1 (en) 2021-11-01 2023-05-04 Tome Biosciences, Inc. Single construct platform for simultaneous delivery of gene editing machinery and nucleic acid cargo
WO2023122764A1 (en) 2021-12-22 2023-06-29 Tome Biosciences, Inc. Co-delivery of a gene editor construct and a donor template
US20230357437A1 (en) 2022-03-09 2023-11-09 Selecta Biosciences, Inc. Immunosuppressants in combination with anti-igm agents and related dosing
WO2023196802A1 (en) 2022-04-04 2023-10-12 The Broad Institute, Inc. Cas9 variants having non-canonical pam specificities and uses thereof
WO2023205744A1 (en) 2022-04-20 2023-10-26 Tome Biosciences, Inc. Programmable gene insertion compositions
WO2023212715A1 (en) 2022-04-28 2023-11-02 The Broad Institute, Inc. Aav vectors encoding base editors and uses thereof
WO2023215711A1 (en) 2022-05-01 2023-11-09 Chroma Medicine, Inc. Compositions and methods for epigenetic regulation of pcsk9 expression
WO2023225670A2 (en) 2022-05-20 2023-11-23 Tome Biosciences, Inc. Ex vivo programmable gene insertion
WO2023230613A1 (en) 2022-05-27 2023-11-30 The Broad Institute, Inc. Improved mitochondrial base editors and methods for editing mitochondrial dna
WO2023240137A1 (en) 2022-06-08 2023-12-14 The Board Institute, Inc. Evolved cas14a1 variants, compositions, and methods of making and using same in genome editing
WO2023250490A1 (en) 2022-06-23 2023-12-28 Chroma Medicine, Inc. Compositions and methods for epigenetic regulation of trac expression
WO2023250509A1 (en) 2022-06-23 2023-12-28 Chroma Medicine, Inc. Compositions and methods for epigenetic regulation of b2m expression
WO2023250512A1 (en) 2022-06-23 2023-12-28 Chroma Medicine, Inc. Compositions and methods for epigenetic regulation of ciita expression
WO2023250511A2 (en) 2022-06-24 2023-12-28 Tune Therapeutics, Inc. Compositions, systems, and methods for reducing low-density lipoprotein through targeted gene repression
WO2024015881A2 (en) 2022-07-12 2024-01-18 Tune Therapeutics, Inc. Compositions, systems, and methods for targeted transcriptional activation
WO2024020587A2 (en) 2022-07-22 2024-01-25 Tome Biosciences, Inc. Pleiopluripotent stem cell programmable gene insertion
WO2024030432A1 (en) 2022-08-01 2024-02-08 Gensaic, Inc. Therapeutic phage-derived particles
WO2024040083A1 (en) 2022-08-16 2024-02-22 The Broad Institute, Inc. Evolved cytosine deaminases and methods of editing dna using same
WO2024040254A2 (en) 2022-08-19 2024-02-22 Tune Therapeutics, Inc. Compositions, systems, and methods for regulation of hepatitis b virus through targeted gene repression
WO2024052681A1 (en) 2022-09-08 2024-03-14 The University Court Of The University Of Edinburgh Rett syndrome therapy
WO2024059618A2 (en) 2022-09-13 2024-03-21 Arsenal Biosciences, Inc. Immune cells having co-expressed tgfbr shrnas
WO2024059824A2 (en) 2022-09-16 2024-03-21 Arsenal Biosciences, Inc. Immune cells with combination gene perturbations
WO2024064642A2 (en) 2022-09-19 2024-03-28 Tune Therapeutics, Inc. Compositions, systems, and methods for modulating t cell function
WO2024064910A1 (en) 2022-09-23 2024-03-28 Chroma Medicine, Inc. Compositions and methods for epigenetic regulation of hbv gene expression
WO2024081879A1 (en) 2022-10-14 2024-04-18 Chroma Medicine, Inc. Compositions and methods for epigenetic regulation of cd247 expression

Family Cites Families (1569)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7993A (en) * 1851-03-18 Coktstetiction
US4235871A (en) 1978-02-24 1980-11-25 Papahadjopoulos Demetrios P Method of encapsulating biologically active materials in lipid vesicles
US4182449A (en) 1978-04-18 1980-01-08 Kozlow William J Adhesive bandage and package
US4501728A (en) 1983-01-06 1985-02-26 Technology Unlimited, Inc. Masking of liposomes from RES recognition
US4880635B1 (en) 1984-08-08 1996-07-02 Liposome Company Dehydrated liposomes
US4921757A (en) 1985-04-26 1990-05-01 Massachusetts Institute Of Technology System for delayed and pulsed release of biologically active substances
US5139941A (en) 1985-10-31 1992-08-18 University Of Florida Research Foundation, Inc. AAV transduction vectors
US4737323A (en) 1986-02-13 1988-04-12 Liposome Technology, Inc. Liposome extrusion method
US4920016A (en) 1986-12-24 1990-04-24 Linear Technology, Inc. Liposomes with enhanced circulation time
US4837028A (en) 1986-12-24 1989-06-06 Liposome Technology, Inc. Liposomes with enhanced circulation time
JPH0825869B2 (ja) 1987-02-09 1996-03-13 株式会社ビタミン研究所 抗腫瘍剤包埋リポソ−ム製剤
US4917951A (en) 1987-07-28 1990-04-17 Micro-Pak, Inc. Lipid vesicles formed of surfactants and steroids
US4911928A (en) 1987-03-13 1990-03-27 Micro-Pak, Inc. Paucilamellar lipid vesicles
ATE80604T1 (de) 1987-04-23 1992-10-15 Fmc Corp Insektizide cyclopropyl-substituierte di(aryl)verbindungen.
US5580737A (en) 1990-06-11 1996-12-03 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. High-affinity nucleic acid ligands that discriminate between theophylline and caffeine
US6872816B1 (en) 1996-01-24 2005-03-29 Third Wave Technologies, Inc. Nucleic acid detection kits
JPH05274181A (ja) 1992-03-25 1993-10-22 Nec Corp ブレークポイント設定・解除方式
US5651981A (en) 1994-03-29 1997-07-29 Northwestern University Cationic phospholipids for transfection
US5449639A (en) 1994-10-24 1995-09-12 Taiwan Semiconductor Manufacturing Company Ltd. Disposable metal anti-reflection coating process used together with metal dry/wet etch
US5767099A (en) 1994-12-09 1998-06-16 Genzyme Corporation Cationic amphiphiles containing amino acid or dervatized amino acid groups for intracellular delivery of therapeutic molecules
US6057153A (en) 1995-01-13 2000-05-02 Yale University Stabilized external guide sequences
US5795587A (en) 1995-01-23 1998-08-18 University Of Pittsburgh Stable lipid-comprising drug delivery complexes and methods for their production
US5830430A (en) 1995-02-21 1998-11-03 Imarx Pharmaceutical Corp. Cationic lipids and the use thereof
US5851548A (en) 1995-06-07 1998-12-22 Gen-Probe Incorporated Liposomes containing cationic lipids and vitamin D
US5962313A (en) 1996-01-18 1999-10-05 Avigen, Inc. Adeno-associated virus vectors comprising a gene encoding a lyosomal enzyme
US5981182A (en) 1997-03-13 1999-11-09 Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University Vector constructs for the selection and identification of open reading frames
US8097648B2 (en) 1998-06-17 2012-01-17 Eisai R&D Management Co., Ltd. Methods and compositions for use in treating cancer
WO2000027795A1 (en) * 1998-11-12 2000-05-18 Invitrogen Corporation Transfection reagents
US6599692B1 (en) 1999-09-14 2003-07-29 Sangamo Bioscience, Inc. Functional genomics using zinc finger proteins
US6534261B1 (en) 1999-01-12 2003-03-18 Sangamo Biosciences, Inc. Regulation of endogenous gene expression in cells using zinc finger proteins
US6453242B1 (en) 1999-01-12 2002-09-17 Sangamo Biosciences, Inc. Selection of sites for targeting by zinc finger proteins and methods of designing zinc finger proteins to bind to preselected sites
US7013219B2 (en) 1999-01-12 2006-03-14 Sangamo Biosciences, Inc. Regulation of endogenous gene expression in cells using zinc finger proteins
US20090130718A1 (en) 1999-02-04 2009-05-21 Diversa Corporation Gene site saturation mutagenesis
WO2000058480A1 (fr) 1999-03-29 2000-10-05 Kansai Technology Licensing Organization Co., Ltd. Nouvelle cytidine desaminase
DK1230268T3 (da) 1999-11-18 2010-02-08 Epimmune Inc Heteroklitiske analoger af klasse I-epitoper
JP2003514564A (ja) 1999-11-24 2003-04-22 エムシーエス マイクロ キャリア システムズ ゲーエムベーハー 核局在化シグナルまたはタンパク質導入領域の多量体を含むポリペプチド、および分子を細胞内へ移入するためのその使用法
ATE309536T1 (de) 1999-12-06 2005-11-15 Sangamo Biosciences Inc Methoden zur verwendung von randomisierten zinkfingerprotein-bibliotheken zur identifizierung von genfunktionen
WO2001059450A2 (en) 2000-02-08 2001-08-16 Sangamo Biosciences, Inc. Cells expressing zinc finger protein for drug discovery
AU2002227383B2 (en) 2000-10-30 2004-07-08 Euro-Celtique S.A. Controlled release hydrocodone formulations
US20040003420A1 (en) 2000-11-10 2004-01-01 Ralf Kuhn Modified recombinase
NZ527208A (en) 2001-01-25 2005-05-27 Evolva Ltd Concatemers of differentially expressed multiple genes
US20050222030A1 (en) 2001-02-21 2005-10-06 Anthony Allison Modified annexin proteins and methods for preventing thrombosis
DE60227069D1 (de) 2001-02-27 2008-07-24 Univ Rochester VERFAHREN UND ZUSAMMENSETZUNGEN ZUR MODIFIKATION DER BEARBEITUNG VON APOLIPOPROTEIN B-mRNA
DK1456360T3 (en) 2001-04-19 2015-08-31 Scripps Research Inst Methods and Composition for Preparation of Orthogonal TRNA-Aminoacyl-TRNA Synthetase Pairs
AU2002330714A1 (en) 2001-05-30 2003-01-02 Biomedical Center In silico screening for phenotype-associated expressed sequences
EP1578932A4 (en) 2002-07-12 2006-08-30 Affymetrix Inc SYNTHETIC MARKER GENES
EP1546170A4 (en) 2002-09-20 2007-08-29 Univ Yale RIBOSWITCHS, METHODS OF USE, AND COMPOSITIONS FOR USE WITH RIBOSWITCHES
DE602004017443D1 (de) 2003-04-14 2008-12-11 Caliper Life Sciences Inc Reduktion der migrations-shift-assay-interferenz
EP1649004A4 (en) 2003-07-07 2008-04-09 Scripps Research Inst COMPOSITIONS WITH PAIRS OF ORTHOGONAL LYSYL-TRNA AND AMINOACYL-TRNA-SYNTHETASE AND USES THEREOF
EP3222715A1 (en) 2003-08-08 2017-09-27 Sangamo BioSciences, Inc. Methods and compositions for targeted cleavage and recombination
US7192739B2 (en) 2004-03-30 2007-03-20 President And Fellows Of Harvard College Ligand-dependent protein splicing
US7919277B2 (en) 2004-04-28 2011-04-05 Danisco A/S Detection and typing of bacterial strains
WO2006002547A1 (en) 2004-07-06 2006-01-12 UNIVERSITé DE SHERBROOKE A target-dependent nucleic acid adapter
WO2006023207A2 (en) 2004-08-19 2006-03-02 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Health And Human Services, Nih Coacervate of anionic and cationic polymer forming microparticles for the sustained release of therapeutic agents
JP5101288B2 (ja) 2004-10-05 2012-12-19 カリフォルニア インスティテュート オブ テクノロジー アプタマー調節される核酸及びその利用
JP2006248978A (ja) 2005-03-10 2006-09-21 Mebiopharm Co Ltd 新規なリポソーム製剤
US10066233B2 (en) 2005-08-26 2018-09-04 Dupont Nutrition Biosciences Aps Method of modulating cell resistance
AU2012244264B2 (en) 2005-08-26 2015-08-06 Dupont Nutrition Biosciences Aps Use
AU2015252023B2 (en) 2005-08-26 2017-06-29 Dupont Nutrition Biosciences Aps Use
WO2007037444A1 (ja) * 2005-09-30 2007-04-05 National University Corporation Hokkaido University 目的物質を核内又は細胞内に送達するためのベクター
US20080051317A1 (en) 2005-12-15 2008-02-28 George Church Polypeptides comprising unnatural amino acids, methods for their production and uses therefor
CA2960570C (en) 2006-05-05 2018-05-08 Molecular Transfer, Inc. Lipids for transfection of eukaryotic cells
EP2426220B1 (en) 2006-05-19 2016-06-22 DuPont Nutrition Biosciences ApS Tagged microorganisms and methods of tagging
EP2492684B1 (en) 2006-06-02 2016-12-28 President and Fellows of Harvard College Protein surface remodeling
RU2531343C2 (ru) 2007-03-02 2014-10-20 ДюПон Ньютришн Байосайенсиз АпС, Способ генерирования заквасочной культуры, заквасочная культура и способ ферментации с ее использованием
WO2009042163A2 (en) 2007-09-27 2009-04-02 Sangamo Biosciences, Inc. Rapid in vivo identification of biologically active nucleases
US9029524B2 (en) 2007-12-10 2015-05-12 California Institute Of Technology Signal activated RNA interference
WO2009146179A1 (en) 2008-04-15 2009-12-03 University Of Iowa Research Foundation Zinc finger nuclease for the cftr gene and methods of use thereof
AU2009243187C1 (en) * 2008-04-28 2015-12-24 President And Fellows Of Harvard College Supercharged proteins for cell penetration
WO2009132455A1 (en) 2008-04-30 2009-11-05 Paul Xiang-Qin Liu Protein splicing using short terminal split inteins
US8546553B2 (en) 2008-07-25 2013-10-01 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Prokaryotic RNAi-like system and methods of use
EP2159286A1 (en) 2008-09-01 2010-03-03 Consiglio Nazionale Delle Ricerche Method for obtaining oligonucleotide aptamers and uses thereof
WO2010026537A1 (en) 2008-09-05 2010-03-11 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) Novel multimodular assembly useful for intracellular delivery
US8636884B2 (en) 2008-09-15 2014-01-28 Abbott Diabetes Care Inc. Cationic polymer based wired enzyme formulations for use in analyte sensors
US20100076057A1 (en) 2008-09-23 2010-03-25 Northwestern University TARGET DNA INTERFERENCE WITH crRNA
WO2010054108A2 (en) 2008-11-06 2010-05-14 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Cas6 polypeptides and methods of use
WO2010054154A2 (en) 2008-11-07 2010-05-14 Danisco A/S Bifidobacteria crispr sequences
US9175341B2 (en) 2008-12-11 2015-11-03 Pacific Biosciences Of California, Inc. Methods for identifying nucleic acid modifications
US9175338B2 (en) 2008-12-11 2015-11-03 Pacific Biosciences Of California, Inc. Methods for identifying nucleic acid modifications
WO2010075424A2 (en) 2008-12-22 2010-07-01 The Regents Of University Of California Compositions and methods for downregulating prokaryotic genes
US8389679B2 (en) 2009-02-05 2013-03-05 The Regents Of The University Of California Targeted antimicrobial moieties
CN105274004B (zh) 2009-03-06 2019-08-09 合成基因组股份有限公司 用于克隆和操作基因组的方法
EP2425023B1 (en) 2009-04-27 2015-12-23 Pacific Biosciences of California, Inc. Real-time sequencing methods and systems
WO2010129023A2 (en) 2009-04-28 2010-11-11 President And Fellows Of Harvard College Supercharged proteins for cell penetration
WO2010132092A2 (en) 2009-05-12 2010-11-18 The Scripps Research Institute Cytidine deaminase fusions and related methods
WO2010144150A2 (en) 2009-06-12 2010-12-16 Pacific Biosciences Of California, Inc. Real-time analytical methods and systems
AU2010266705B2 (en) 2009-06-30 2014-06-05 Sangamo Therapeutics, Inc. Rapid screening of biologically active nucleases and isolation of nuclease-modified cells
WO2011000106A1 (en) 2009-07-01 2011-01-06 Protiva Biotherapeutics, Inc. Improved cationic lipids and methods for the delivery of therapeutic agents
US20120178647A1 (en) 2009-08-03 2012-07-12 The General Hospital Corporation Engineering of zinc finger arrays by context-dependent assembly
DK2462230T3 (en) 2009-08-03 2015-10-19 Recombinetics Inc METHODS AND COMPOSITIONS FOR TARGETED RE-MODIFICATION
GB0913681D0 (en) 2009-08-05 2009-09-16 Glaxosmithkline Biolog Sa Immunogenic composition
MX2012005069A (es) 2009-10-30 2012-07-17 Synthetic Genomics Inc Codificar texto hacia secuencias de acido nucleico.
KR101934923B1 (ko) 2009-11-02 2019-04-10 유니버시티 오브 워싱톤 스루 이츠 센터 포 커머셜리제이션 치료학적 뉴클레아제 조성물 및 방법
US20110104787A1 (en) 2009-11-05 2011-05-05 President And Fellows Of Harvard College Fusion Peptides That Bind to and Modify Target Nucleic Acid Sequences
WO2011068916A1 (en) 2009-12-01 2011-06-09 Intezyne Technologies, Incorporated Pegylated polyplexes for polynucleotide delivery
WO2011075627A1 (en) 2009-12-18 2011-06-23 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Use of cytidine deaminase-related agents to promote demethylation and cell reprogramming
NZ600546A (en) 2010-01-22 2014-08-29 Dow Agrosciences Llc Excision of transgenes in genetically modified organisms
WO2011109031A1 (en) 2010-03-05 2011-09-09 Synthetic Genomics, Inc. Methods for cloning and manipulating genomes
US8557961B2 (en) 2010-04-02 2013-10-15 Amunix Operating Inc. Alpha 1-antitrypsin compositions and methods of making and using same
CA2798703A1 (en) 2010-05-10 2011-11-17 The Regents Of The University Of California Endoribonuclease compositions and methods of use thereof
AU2011256838B2 (en) 2010-05-17 2014-10-09 Sangamo Therapeutics, Inc. Novel DNA-binding proteins and uses thereof
GB201008267D0 (en) 2010-05-18 2010-06-30 Univ Edinburgh Cationic lipids
JP5957646B2 (ja) 2010-06-04 2016-07-27 サーナ・セラピューティクス・インコーポレイテッドSirna Therapeutics,Inc. オリゴヌクレオチド送達のための新規な低分子量カチオン性脂質
WO2011159369A1 (en) 2010-06-14 2011-12-22 Iowa State University Research Foundation, Inc. Nuclease activity of tal effector and foki fusion protein
BR112013006381B1 (pt) 2010-09-20 2024-02-15 Spi Pharma Inc Composição que compreende um material de núcleo tendo um valor de sabor e um revestimento polimérico e formulação farmacêutica
BR112013009583A2 (pt) 2010-10-20 2017-05-30 Dupont Nutrition Biosci Aps ácido nucleico, vetor, célula hospedeira, métodos de preparação de uma linhagem bacteriana variante de tipificação, de marcação, de geração e de controle de populações bacterianas, linhagem e célula bacteriana variante, kit, uso de um ácido nucleico, cultivo celular, produto, processo de preparação de produtos, mutantes de fago e mutante de escape de fago
WO2012070031A1 (en) 2010-11-26 2012-05-31 University Of The Witwatersrand, Johannesburg Polymeric matrix of polymer-lipid nanoparticles as a pharmaceutical dosage form
KR101255338B1 (ko) 2010-12-15 2013-04-16 포항공과대학교 산학협력단 표적 세포에 대한 폴리뉴클레오티드 전달체
WO2012083017A2 (en) 2010-12-16 2012-06-21 Celgene Corporation Controlled release oral dosage forms of poorly soluble drugs and uses thereof
US9499592B2 (en) 2011-01-26 2016-11-22 President And Fellows Of Harvard College Transcription activator-like effectors
US9528124B2 (en) 2013-08-27 2016-12-27 Recombinetics, Inc. Efficient non-meiotic allele introgression
WO2012125445A2 (en) 2011-03-11 2012-09-20 President And Fellows Of Harvard College Small molecule-dependent inteins and uses thereof
US9164079B2 (en) 2011-03-17 2015-10-20 Greyledge Technologies Llc Systems for autologous biological therapeutics
US20120244601A1 (en) 2011-03-22 2012-09-27 Bertozzi Carolyn R Riboswitch based inducible gene expression platform
US8709466B2 (en) 2011-03-31 2014-04-29 International Business Machines Corporation Cationic polymers for antimicrobial applications and delivery of bioactive materials
US20140115726A1 (en) 2011-04-05 2014-04-24 Cellectis New tale-protein scaffolds and uses thereof
WO2012148953A1 (en) 2011-04-25 2012-11-01 Stc.Unm Solid compositions for pharmaceutical use
EP2702160B1 (en) 2011-04-27 2020-05-27 Amyris, Inc. Methods for genomic modification
WO2012158985A2 (en) 2011-05-17 2012-11-22 Transposagen Biopharmaceuticals, Inc. Methods for site-specific genetic modification in spermatogonial stem cells using zinc finger nuclease (zfn) for the creation of model organisms
US8691750B2 (en) 2011-05-17 2014-04-08 Axolabs Gmbh Lipids and compositions for intracellular delivery of biologically active compounds
WO2012158986A2 (en) 2011-05-17 2012-11-22 Transposagen Biopharmaceuticals, Inc. Methods for site-specific genetic modification in stem cells using xanthomonas tal nucleases (xtn) for the creation of model organisms
WO2012164565A1 (en) 2011-06-01 2012-12-06 Yeda Research And Development Co. Ltd. Compositions and methods for downregulating prokaryotic genes
EP3461896B1 (en) 2011-07-15 2023-11-29 The General Hospital Corporation Methods of transcription activator like effector assembly
CN103857797A (zh) 2011-07-19 2014-06-11 帷幄生物技术公司 用于修复软骨损伤的非遗传修饰性重编程细胞的组合物和方法
EP3613852A3 (en) 2011-07-22 2020-04-22 President and Fellows of Harvard College Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity
DK2762569T3 (en) 2011-09-28 2018-08-27 Ribomic Inc NGF aptamer and its use.
GB2496687A (en) 2011-11-21 2013-05-22 Gw Pharma Ltd Tetrahydrocannabivarin (THCV) in the protection of pancreatic islet cells
KR20140102759A (ko) 2011-12-16 2014-08-22 모더나 세라퓨틱스, 인코포레이티드 변형된 뉴클레오사이드, 뉴클레오타이드 및 핵산 조성물
GB201122458D0 (en) 2011-12-30 2012-02-08 Univ Wageningen Modified cascade ribonucleoproteins and uses thereof
WO2013119602A1 (en) 2012-02-06 2013-08-15 President And Fellows Of Harvard College Arrdc1-mediated microvesicles (armms) and uses thereof
US20150166969A1 (en) 2012-02-24 2015-06-18 Fred Hutchinson Cancer Research Center Compositions and methods for the treatment of hemoglobinopathies
CN108285491B (zh) 2012-02-29 2021-08-10 桑格摩生物科学股份有限公司 治疗亨廷顿氏病的方法和组合物
SG11201405783VA (en) 2012-03-17 2014-10-30 Univ California Fast diagnosis and personalized treatments for acne
US9637739B2 (en) 2012-03-20 2017-05-02 Vilnius University RNA-directed DNA cleavage by the Cas9-crRNA complex
WO2013141680A1 (en) 2012-03-20 2013-09-26 Vilnius University RNA-DIRECTED DNA CLEAVAGE BY THE Cas9-crRNA COMPLEX
WO2013152359A1 (en) 2012-04-06 2013-10-10 The Regents Of The University Of California Novel tetrazines and method of synthesizing the same
WO2013160230A1 (en) 2012-04-23 2013-10-31 Bayer Cropscience Nv Targeted genome engineering in plants
CN104428414B (zh) 2012-05-02 2022-01-21 陶氏益农公司 苹果酸脱氢酶的靶向修饰
CN104471067B (zh) 2012-05-07 2020-08-14 桑格摩生物治疗股份有限公司 用于核酸酶介导的转基因靶向整合的方法和组合物
WO2013169398A2 (en) 2012-05-09 2013-11-14 Georgia Tech Research Corporation Systems and methods for improving nuclease specificity and activity
KR102247979B1 (ko) 2012-05-25 2021-05-04 셀렉티스 면역요법을 위한 동종이형 및 면역억제제 저항성인 t 세포의 조작 방법
PT2800811T (pt) 2012-05-25 2017-08-17 Univ California Métodos e composições para modificação de adn alvo dirigida por arn e para modulação dirigida por arn de transcrição
US20150017136A1 (en) 2013-07-15 2015-01-15 Cellectis Methods for engineering allogeneic and highly active t cell for immunotherapy
KR20150027756A (ko) 2012-05-30 2015-03-12 베일러 칼리지 오브 메디신 Dna 수복, 변경 및 대체를 위한 도구로서의 초나선 미니벡터
WO2013188037A2 (en) 2012-06-11 2013-12-19 Agilent Technologies, Inc Method of adaptor-dimer subtraction using a crispr cas6 protein
WO2013188522A2 (en) 2012-06-12 2013-12-19 Genentech, Inc. Methods and compositions for generating conditional knock-out alleles
EP2674501A1 (en) 2012-06-14 2013-12-18 Agence nationale de sécurité sanitaire de l'alimentation,de l'environnement et du travail Method for detecting and identifying enterohemorrhagic Escherichia coli
WO2013188638A2 (en) 2012-06-15 2013-12-19 The Regents Of The University Of California Endoribonucleases and methods of use thereof
CA2877290A1 (en) 2012-06-19 2013-12-27 Daniel F. Voytas Gene targeting in plants using dna viruses
EP2867361B1 (en) 2012-06-29 2017-11-01 Massachusetts Institute of Technology Massively parallel combinatorial genetics
US9125508B2 (en) 2012-06-30 2015-09-08 Seasons 4, Inc. Collapsible tree system
HUE030799T2 (en) 2012-07-11 2017-06-28 Sangamo Biosciences Inc Methods and preparations for the treatment of lysosomal storage diseases
EP2872154B1 (en) 2012-07-11 2017-05-31 Sangamo BioSciences, Inc. Methods and compositions for delivery of biologics
EP3494997B1 (en) 2012-07-25 2019-09-18 The Broad Institute, Inc. Inducible dna binding proteins and genome perturbation tools and applications thereof
US10058078B2 (en) 2012-07-31 2018-08-28 Recombinetics, Inc. Production of FMDV-resistant livestock by allele substitution
WO2014020608A1 (en) 2012-07-31 2014-02-06 Yeda Research And Development Co. Ltd. Methods of diagnosing and treating motor neuron diseases
WO2014022702A2 (en) 2012-08-03 2014-02-06 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for controlling gene expression by rna processing
AU2013308770B2 (en) 2012-08-29 2019-01-17 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for treatment of a genetic condition
WO2014039523A1 (en) 2012-09-04 2014-03-13 Cellectis Multi-chain chimeric antigen receptor and uses thereof
EP3750999B1 (en) 2012-09-04 2022-06-29 The Scripps Research Institute Chimeric polypeptides having targeted binding specificity
WO2014039513A2 (en) 2012-09-04 2014-03-13 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Inhibition of diacylglycerol kinase to augment adoptive t cell transfer
UA119135C2 (uk) 2012-09-07 2019-05-10 ДАУ АГРОСАЙЄНСІЗ ЕлЕлСі Спосіб отримання трансгенної рослини
UA118090C2 (uk) 2012-09-07 2018-11-26 ДАУ АГРОСАЙЄНСІЗ ЕлЕлСі Спосіб інтегрування послідовності нуклеїнової кислоти, що представляє інтерес, у ген fad2 у клітині сої та специфічний для локусу fad2 білок, що зв'язується, здатний індукувати спрямований розрив
US20140075593A1 (en) 2012-09-07 2014-03-13 Dow Agrosciences Llc Fluorescence activated cell sorting (facs) enrichment to generate plants
CA2884162C (en) 2012-09-07 2020-12-29 Dow Agrosciences Llc Fad3 performance loci and corresponding target site specific binding proteins capable of inducing targeted breaks
WO2014043143A1 (en) 2012-09-11 2014-03-20 Life Technologies Corporation Nucleic acid amplification
GB201216564D0 (en) 2012-09-17 2012-10-31 Univ Edinburgh Genetically edited animal
WO2014047103A2 (en) 2012-09-18 2014-03-27 The Translational Genomics Research Institute Isolated genes and transgenic organisms for producing biofuels
EP2906684B8 (en) 2012-10-10 2020-09-02 Sangamo Therapeutics, Inc. T cell modifying compounds and uses thereof
EP2906602B1 (en) 2012-10-12 2019-01-16 The General Hospital Corporation Transcription activator-like effector (tale) - lysine-specific demethylase 1 (lsd1) fusion proteins
CN110643600A (zh) 2012-10-23 2020-01-03 基因工具股份有限公司 用于切割靶dna的系统及其用途
US20140115728A1 (en) 2012-10-24 2014-04-24 A. Joseph Tector Double knockout (gt/cmah-ko) pigs, organs and tissues
AR093291A1 (es) 2012-10-30 2015-05-27 Recombinetics Inc Celulas con genes neuroendocrinos modificados
US11041165B2 (en) 2012-10-31 2021-06-22 Two Blades Foundation Identification of a Xanthomonas euvesicatoria resistance gene from pepper (Capsicum annuum) and method for generating plants with resistance
US20150291967A1 (en) 2012-10-31 2015-10-15 Luc Mathis Coupling herbicide resistance with targeted insertion of transgenes in plants
KR102596302B1 (ko) 2012-11-01 2023-11-01 팩터 바이오사이언스 인크. 세포에서 단백질을 발현시키는 방법들과 생성물들
WO2014071235A1 (en) 2012-11-01 2014-05-08 Massachusetts Institute Of Technology Genetic device for the controlled destruction of dna
US20140127752A1 (en) 2012-11-07 2014-05-08 Zhaohui Zhou Method, composition, and reagent kit for targeted genomic enrichment
EP2917336B1 (en) 2012-11-09 2018-06-27 Marco Archetti Diffusible factors and cancer cells
MX2015006220A (es) 2012-11-20 2016-07-20 Simplot Co J R Insercion de adn de tranferencia mediada por efectores tipo activadores de la transcripción (tal).
WO2014081730A1 (en) 2012-11-20 2014-05-30 Cold Spring Harbor Laboratory Mutations in solanaceae plants that modulate shoot architecture and enhance yield-related phenotypes
US20140140969A1 (en) 2012-11-20 2014-05-22 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for muscular dystrophies
CA2892860C (en) 2012-11-27 2023-01-03 Children's Medical Center Corporation Targeting bcl11a distal regulatory elements for fetal hemoglobin reinduction
WO2014085261A1 (en) 2012-11-29 2014-06-05 North Carolina State University Synthetic pathway for biological carbon dioxide sequestration
WO2014082644A1 (en) 2012-11-30 2014-06-05 WULFF, Peter, Samuel Circular rna for inhibition of microrna
US20160010154A1 (en) 2012-11-30 2016-01-14 The Parkinson's Institute Screening assays for therapeutics for parkinson's disease
AU2013355327A1 (en) 2012-12-05 2015-06-11 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for regulation of metabolic disorders
US9447422B2 (en) 2012-12-06 2016-09-20 Synthetic Genomics, Inc. Autonomous replication sequences and episomal DNA molecules
WO2014089533A2 (en) 2012-12-06 2014-06-12 Synthetic Genomics, Inc. Algal mutants having a locked-in high light acclimated phenotype
ES2769310T3 (es) 2012-12-06 2020-06-25 Sigma Aldrich Co Llc Modificación y regulación del genoma basada en CRISPR
US9914931B2 (en) 2012-12-07 2018-03-13 Synthetic Genomics, Inc. Nannochloropsis spliced leader sequences and uses therefor
EP2928303A4 (en) 2012-12-07 2016-07-13 Haplomics Inc FACTOR VIII MUTATION REPAIR AND TOLERANCE INDUCTION
WO2014093479A1 (en) 2012-12-11 2014-06-19 Montana State University Crispr (clustered regularly interspaced short palindromic repeats) rna-guided control of gene regulation
EP2931892B1 (en) 2012-12-12 2018-09-12 The Broad Institute, Inc. Methods, models, systems, and apparatus for identifying target sequences for cas enzymes or crispr-cas systems for target sequences and conveying results thereof
EP2931899A1 (en) 2012-12-12 2015-10-21 The Broad Institute, Inc. Functional genomics using crispr-cas systems, compositions, methods, knock out libraries and applications thereof
SG10201912327SA (en) 2012-12-12 2020-02-27 Broad Inst Inc Engineering and Optimization of Improved Systems, Methods and Enzyme Compositions for Sequence Manipulation
US20140186843A1 (en) 2012-12-12 2014-07-03 Massachusetts Institute Of Technology Methods, systems, and apparatus for identifying target sequences for cas enzymes or crispr-cas systems for target sequences and conveying results thereof
US20140310830A1 (en) 2012-12-12 2014-10-16 Feng Zhang CRISPR-Cas Nickase Systems, Methods And Compositions For Sequence Manipulation in Eukaryotes
ES2635244T3 (es) 2012-12-12 2017-10-03 The Broad Institute, Inc. Sistemas, métodos y composiciones de componentes de CRISPR-Cas para manipulación de secuencias
MX2015007550A (es) 2012-12-12 2017-02-02 Broad Inst Inc Suministro, modificación y optimización de sistemas, métodos y composiciones para la manipulación de secuencias y aplicaciones terapéuticas.
US8697359B1 (en) 2012-12-12 2014-04-15 The Broad Institute, Inc. CRISPR-Cas systems and methods for altering expression of gene products
EP4279588A3 (en) 2012-12-12 2024-01-17 The Broad Institute, Inc. Engineering of systems, methods and optimized guide compositions for sequence manipulation
EP3825401A1 (en) 2012-12-12 2021-05-26 The Broad Institute, Inc. Crispr-cas component systems, methods and compositions for sequence manipulation
WO2014093655A2 (en) 2012-12-12 2014-06-19 The Broad Institute, Inc. Engineering and optimization of systems, methods and compositions for sequence manipulation with functional domains
JP6473419B2 (ja) 2012-12-13 2019-02-20 ダウ アグロサイエンシィズ エルエルシー 部位特異的ヌクレアーゼ活性のdna検出方法
US9691017B2 (en) 2012-12-13 2017-06-27 Massachusetts Institute Of Technology Recombinase-based logic and memory systems
WO2014093768A1 (en) 2012-12-13 2014-06-19 Ainley W Michael Precision gene targeting to a particular locus in maize
EP3553174A1 (en) 2012-12-17 2019-10-16 President and Fellows of Harvard College Rna-guided human genome engineering
US20140178561A1 (en) 2012-12-21 2014-06-26 Cellectis Potatoes with reduced cold-induced sweetening
JP6583918B2 (ja) 2012-12-27 2019-10-02 キージーン ナムローゼ フェンノートシャップ 植物における遺伝連鎖を解消するための方法
CA2897390A1 (en) 2013-01-10 2014-07-17 Ge Healthcare Dharmacon, Inc. Templates, libraries, kits and methods for generating molecules
AU2014205134B2 (en) 2013-01-14 2020-01-16 Recombinetics, Inc. Hornless livestock
WO2014113493A1 (en) 2013-01-16 2014-07-24 Emory University Cas9-nucleic acid complexes and uses related thereto
CN103233028B (zh) 2013-01-25 2015-05-13 南京徇齐生物技术有限公司 一种无物种限制无生物安全性问题的真核生物基因打靶方法及螺旋结构dna序列
EP2954055B1 (en) 2013-02-05 2018-04-11 University of Georgia Research Foundation, Inc. Cell lines for virus production and methods of use
WO2014124226A1 (en) 2013-02-07 2014-08-14 The Rockefeller University Sequence specific antimicrobials
WO2014127287A1 (en) 2013-02-14 2014-08-21 Massachusetts Institute Of Technology Method for in vivo tergated mutagenesis
ES2768291T3 (es) 2013-02-14 2020-06-22 Univ Osaka Método para aislar una región genómica específica utilizando una molécula que se une específicamente a una secuencia de ADN endógena
RU2690352C2 (ru) 2013-02-20 2019-05-31 Регенерон Фармасютикалс, Инк. Генетическая модификация крыс
WO2014128659A1 (en) 2013-02-21 2014-08-28 Cellectis Method to counter-select cells or organisms by linking loci to nuclease components
ES2522765B2 (es) 2013-02-22 2015-03-18 Universidad De Alicante Método para dectectar inserciones de espaciadores en estructuras CRISPR
WO2014130955A1 (en) 2013-02-25 2014-08-28 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for enhancing nuclease-mediated gene disruption
JP2016507244A (ja) 2013-02-27 2016-03-10 ヘルムホルツ・ツェントルム・ミュンヒェン・ドイチェス・フォルシュンクスツェントルム・フューア・ゲズントハイト・ウント・ウムベルト(ゲーエムベーハー)Helmholtz Zentrum MuenchenDeutsches Forschungszentrum fuer Gesundheit und Umwelt (GmbH) Cas9ヌクレアーゼによる卵母細胞における遺伝子編集
WO2014138379A1 (en) 2013-03-06 2014-09-12 The Johns Hopkins University The telomerator-a tool for chromosome engineering
US10612043B2 (en) 2013-03-09 2020-04-07 Agilent Technologies, Inc. Methods of in vivo engineering of large sequences using multiple CRISPR/cas selections of recombineering events
EP2970886B1 (en) 2013-03-12 2018-05-23 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for modification of hla
US10329574B2 (en) 2013-03-12 2019-06-25 E I Du Pont De Nemours And Company Methods for the identification of variant recognition sites for rare-cutting engineered double-strand-break-inducing agents and compositions and uses thereof
WO2014153118A1 (en) 2013-03-14 2014-09-25 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Treatment of diseases and conditions associated with dysregulation of mammalian target of rapamycin complex 1 (mtorc1)
ES2901396T3 (es) 2013-03-14 2022-03-22 Caribou Biosciences Inc Composiciones y métodos de ácidos nucleicos dirigidos a ácido nucleico
EP4136963A1 (en) 2013-03-15 2023-02-22 Cibus US LLC Methods and compositions for increasing efficiency of targeted gene modification using oligonucleotide-mediated gene repair
US11332719B2 (en) 2013-03-15 2022-05-17 The Broad Institute, Inc. Recombinant virus and preparations thereof
US9234213B2 (en) 2013-03-15 2016-01-12 System Biosciences, Llc Compositions and methods directed to CRISPR/Cas genomic engineering systems
CA2906747A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Regents Of The University Of Minnesota Engineering plant genomes using crispr/cas systems
CN110540991B (zh) 2013-03-15 2023-10-24 通用医疗公司 使用截短的引导RNA(tru-gRNA)提高RNA引导的基因组编辑的特异性
WO2014144094A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 J.R. Simplot Company Tal-mediated transfer dna insertion
EP2971006A4 (en) 2013-03-15 2017-02-08 Transposagen Biopharmaceuticals, Inc. Reproducible method for testis-mediated genetic modification (tgm) and sperm-mediated genetic modification (sgm)
US20140273230A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Sigma-Aldrich Co., Llc Crispr-based genome modification and regulation
WO2014204578A1 (en) 2013-06-21 2014-12-24 The General Hospital Corporation Using rna-guided foki nucleases (rfns) to increase specificity for rna-guided genome editing
US20140349400A1 (en) 2013-03-15 2014-11-27 Massachusetts Institute Of Technology Programmable Modification of DNA
US10760064B2 (en) 2013-03-15 2020-09-01 The General Hospital Corporation RNA-guided targeting of genetic and epigenomic regulatory proteins to specific genomic loci
EP2975942B1 (en) 2013-03-21 2018-08-08 Sangamo Therapeutics, Inc. Targeted disruption of t cell receptor genes using engineered zinc finger protein nucleases
US20160053274A1 (en) 2013-04-02 2016-02-25 Bayer Cropscience Nv Targeted genome engineering in eukaryotes
DK2981607T3 (da) 2013-04-03 2020-11-16 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Effektiv generering af tumormålrettede t-celler afledt af pluripotente stamceller
WO2014165349A1 (en) 2013-04-04 2014-10-09 Trustees Of Dartmouth College Compositions and methods for in vivo excision of hiv-1 proviral dna
WO2014165825A2 (en) 2013-04-04 2014-10-09 President And Fellows Of Harvard College Therapeutic uses of genome editing with crispr/cas systems
JP2016514480A (ja) 2013-04-05 2016-05-23 ダウ アグロサイエンシィズ エルエルシー 植物のゲノム内に外因性配列を組み込むための方法および組成物
US20150056629A1 (en) 2013-04-14 2015-02-26 Katriona Guthrie-Honea Compositions, systems, and methods for detecting a DNA sequence
US20160186208A1 (en) 2013-04-16 2016-06-30 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods of Mutating, Modifying or Modulating Nucleic Acid in a Cell or Nonhuman Mammal
JP6411463B2 (ja) 2013-04-16 2018-10-24 リジェネロン・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッドRegeneron Pharmaceuticals, Inc. ラットゲノムの標的改変
WO2014172458A1 (en) 2013-04-16 2014-10-23 University Of Washington Through Its Center For Commercialization Activating an alternative pathway for homology-directed repair to stimulate targeted gene correction and genome engineering
EP2796558A1 (en) 2013-04-23 2014-10-29 Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn Improved gene targeting and nucleic acid carrier molecule, in particular for use in plants
CN103224947B (zh) 2013-04-28 2015-06-10 陕西师范大学 一种基因打靶系统
CA2910427C (en) 2013-05-10 2024-02-20 Sangamo Biosciences, Inc. Delivery methods and compositions for nuclease-mediated genome engineering
ES2901383T3 (es) 2013-05-10 2022-03-22 Whitehead Inst Biomedical Res Producción in vitro de glóbulos rojos con proteínas marcables con sortasa
LT3546572T (lt) 2013-05-13 2024-05-27 Cellectis Cd19 specifinis chimerinis antigeno receptorius ir jo panaudojimas
KR102220382B1 (ko) 2013-05-13 2021-02-25 셀렉티스 면역요법을 위한 매우 활성인 t 세포를 조작하는 방법
CN116083487A (zh) 2013-05-15 2023-05-09 桑格摩生物治疗股份有限公司 用于治疗遗传病状的方法和组合物
WO2014186686A2 (en) 2013-05-17 2014-11-20 Two Blades Foundation Targeted mutagenesis and genome engineering in plants using rna-guided cas nucleases
EP3778899A1 (en) 2013-05-22 2021-02-17 Northwestern University Rna-directed dna cleavage and gene editing by cas9 enzyme from neisseria meningitidis
US9890393B2 (en) 2013-05-29 2018-02-13 Cellectis Methods for engineering T cells for immunotherapy by using RNA-guided CAS nuclease system
JP7065564B2 (ja) 2013-05-29 2022-05-12 セレクティス Cas9ニッカーゼ活性を用いて正確なdna切断をもたらすための方法
US11414695B2 (en) 2013-05-29 2022-08-16 Agilent Technologies, Inc. Nucleic acid enrichment using Cas9
CA2913869C (en) 2013-05-29 2023-01-24 Cellectis New compact scaffold of cas9 in the type ii crispr system
WO2014194190A1 (en) 2013-05-30 2014-12-04 The Penn State Research Foundation Gene targeting and genetic modification of plants via rna-guided genome editing
JP6488283B2 (ja) 2013-05-31 2019-03-20 セレクティスCellectis C−cケモカイン受容体5型(ccr5)遺伝子を開裂するlaglidadgホーミングエンドヌクレアーゼおよびその用途
US20140359796A1 (en) 2013-05-31 2014-12-04 Recombinetics, Inc. Genetically sterile animals
CA2913872C (en) 2013-05-31 2022-01-18 Cellectis A laglidadg homing endonuclease cleaving the t-cell receptor alpha gene and uses thereof
MY177814A (en) 2013-06-04 2020-09-23 Harvard College Rna-guided transcriptional regulation
US9267135B2 (en) 2013-06-04 2016-02-23 President And Fellows Of Harvard College RNA-guided transcriptional regulation
KR20230136697A (ko) 2013-06-05 2023-09-26 듀크 유니버시티 Rna-가이드 유전자 편집 및 유전자 조절
US20150315252A1 (en) 2013-06-11 2015-11-05 Clontech Laboratories, Inc. Protein enriched microvesicles and methods of making and using the same
WO2014201015A2 (en) 2013-06-11 2014-12-18 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for target dna modification
EP3008192B1 (en) 2013-06-11 2019-07-17 Takara Bio USA, Inc. Protein enriched microvesicles and methods of making and using the same
AU2014279694B2 (en) 2013-06-14 2020-07-23 Cellectis Methods for non-transgenic genome editing in plants
EP3011034B1 (en) 2013-06-17 2019-08-07 The Broad Institute, Inc. Delivery, use and therapeutic applications of the crispr-cas systems and compositions for targeting disorders and diseases using viral components
WO2014204723A1 (en) 2013-06-17 2014-12-24 The Broad Institute Inc. Oncogenic models based on delivery and use of the crispr-cas systems, vectors and compositions
WO2014204727A1 (en) 2013-06-17 2014-12-24 The Broad Institute Inc. Functional genomics using crispr-cas systems, compositions methods, screens and applications thereof
RU2716420C2 (ru) 2013-06-17 2020-03-11 Те Брод Инститьют Инк. Доставка и применение систем crispr-cas, векторов и композиций для целенаправленного воздействия и терапии в печени
WO2014204728A1 (en) 2013-06-17 2014-12-24 The Broad Institute Inc. Delivery, engineering and optimization of systems, methods and compositions for targeting and modeling diseases and disorders of post mitotic cells
CN105492611A (zh) 2013-06-17 2016-04-13 布罗德研究所有限公司 用于序列操纵的优化的crispr-cas双切口酶系统、方法以及组合物
AU2014281026B2 (en) 2013-06-17 2020-05-28 Massachusetts Institute Of Technology Delivery, engineering and optimization of tandem guide systems, methods and compositions for sequence manipulation
EP3011011A4 (en) 2013-06-19 2017-05-31 Sigma-Aldrich Co. LLC Targeted integration
US10087453B2 (en) 2013-06-25 2018-10-02 Cellectis Modified diatoms for biofuel production
WO2015002780A1 (en) 2013-07-01 2015-01-08 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Transcription activator-like effector (tale) libraries and methods of synthesis and use
RU2764637C2 (ru) 2013-07-09 2022-01-19 Президент Энд Фэллоуз Оф Харвард Коллидж Мультиплексная геномная инженерия, направляемая рнк
JP2016528890A (ja) 2013-07-09 2016-09-23 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ CRISPR/Cas系を用いるゲノム編集の治療用の使用
KR20160035587A (ko) 2013-07-10 2016-03-31 노파르티스 아게 복수개의 프로테아제 결핍 사상형 진균 세포들 및 그의 이용방법
EP3019005B1 (en) 2013-07-10 2019-02-20 EffStock, LLC Mrap2 knockouts
BR112016000571B1 (pt) 2013-07-10 2023-12-26 President And Fellows Of Harvard College Métodos in vitro para modular a expressão e para alterar um ou mais ácidos nucleicos alvo em uma célula simultaneamente com a regulação da expressão de um ou mais ácidos nucleicos alvo em uma célula, bem como célula de levedura ou bactéria compreendendo ácidos nucleicos
EP3971287A1 (en) 2013-07-11 2022-03-23 ModernaTX, Inc. Compositions comprising synthetic polynucleotides encoding crispr related proteins and synthetic sgrnas and methods of use
CN106222197A (zh) 2013-07-16 2016-12-14 中国科学院上海生命科学研究院 植物基因组定点修饰方法
US9663782B2 (en) 2013-07-19 2017-05-30 Larix Bioscience Llc Methods and compositions for producing double allele knock outs
GB201313235D0 (en) 2013-07-24 2013-09-04 Univ Edinburgh Antiviral Compositions Methods and Animals
US10563225B2 (en) 2013-07-26 2020-02-18 President And Fellows Of Harvard College Genome engineering
CN103388006B (zh) 2013-07-26 2015-10-28 华东师范大学 一种基因定点突变的构建方法
US10421957B2 (en) 2013-07-29 2019-09-24 Agilent Technologies, Inc. DNA assembly using an RNA-programmable nickase
ES2915377T3 (es) 2013-08-02 2022-06-22 Enevolv Inc Procedimientos y células huésped para ingeniería genómica, de vías y biomolécular
ITTO20130669A1 (it) 2013-08-05 2015-02-06 Consiglio Nazionale Ricerche Vettore adeno-associato ricombinante muscolo-specifico e suo impiego nel trattamento di patologie muscolari
US20150044772A1 (en) 2013-08-09 2015-02-12 Sage Labs, Inc. Crispr/cas system-based novel fusion protein and its applications in genome editing
US9163284B2 (en) 2013-08-09 2015-10-20 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease
WO2015024017A2 (en) 2013-08-16 2015-02-19 President And Fellows Of Harvard College Rna polymerase, methods of purification and methods of use
WO2015021990A1 (en) 2013-08-16 2015-02-19 University Of Copenhagen Rna probing method and reagents
NO3036326T3 (ja) 2013-08-20 2018-03-03
MX2016002118A (es) 2013-08-22 2016-06-28 Du Pont Modificacion del genoma de plantas por medio del uso de sistemas de ácido ribonucléico (arn) guía/ endonucleasa cas y metodos de uso.
US9359599B2 (en) 2013-08-22 2016-06-07 President And Fellows Of Harvard College Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof
CA2920899C (en) 2013-08-28 2023-02-28 Sangamo Biosciences, Inc. Compositions for linking dna-binding domains and cleavage domains
GB201315321D0 (en) 2013-08-28 2013-10-09 Koninklijke Nederlandse Akademie Van Wetenschappen Transduction Buffer
US9925248B2 (en) 2013-08-29 2018-03-27 Temple University Of The Commonwealth System Of Higher Education Methods and compositions for RNA-guided treatment of HIV infection
EA036362B1 (ru) 2013-09-04 2020-10-30 Квс Заат Се Растение, устойчивое к гельминтоспориозу
US10167466B2 (en) 2013-09-04 2019-01-01 Csir Site-specific nuclease single-cell assay targeting gene regulatory elements to silence gene expression
JP6649258B2 (ja) 2013-09-04 2020-02-19 ダウ アグロサイエンシィズ エルエルシー ドナー挿入を判定するための作物における迅速ターゲッティング解析
EP4074330A1 (en) 2013-09-05 2022-10-19 Massachusetts Institute of Technology Tuning microbial populations with programmable nucleases
US9737604B2 (en) 2013-09-06 2017-08-22 President And Fellows Of Harvard College Use of cationic lipids to deliver CAS9
US9322037B2 (en) 2013-09-06 2016-04-26 President And Fellows Of Harvard College Cas9-FokI fusion proteins and uses thereof
US9228207B2 (en) 2013-09-06 2016-01-05 President And Fellows Of Harvard College Switchable gRNAs comprising aptamers
WO2016070129A1 (en) 2014-10-30 2016-05-06 President And Fellows Of Harvard College Delivery of negatively charged proteins using cationic lipids
WO2015040075A1 (en) 2013-09-18 2015-03-26 Genome Research Limited Genomic screening methods using rna-guided endonucleases
WO2015040402A1 (en) 2013-09-18 2015-03-26 Kymab Limited Methods. cells & organisms
JP6595459B2 (ja) 2013-09-23 2019-10-23 レンセラール ポリテクニック インスティチュート 種々の細胞集団におけるナノ粒子媒介遺伝子送達、ゲノム編集およびリガンド標的化修飾
US20160237455A1 (en) 2013-09-27 2016-08-18 Editas Medicine, Inc. Crispr-related methods and compositions
US10822606B2 (en) 2013-09-27 2020-11-03 The Regents Of The University Of California Optimized small guide RNAs and methods of use
US20160368995A1 (en) 2013-09-30 2016-12-22 The Regents Of The University Of California Identification of cxcr8, a novel chemokine receptor
WO2015048707A2 (en) 2013-09-30 2015-04-02 Regents Of The University Of Minnesota Conferring resistance to geminiviruses in plants using crispr/cas systems
US20160208214A1 (en) 2013-10-02 2016-07-21 Northeastern University Methods and compositions for generation of developmentally-incompetent eggs in recipients of nuclear genetic transfer
JP5774657B2 (ja) 2013-10-04 2015-09-09 国立大学法人京都大学 エレクトロポレーションを利用した哺乳類の遺伝子改変方法
CA2932581A1 (en) 2013-10-07 2015-04-16 Northeastern University Methods and compositions for ex vivo generation of developmentally competent eggs from germ line cells using autologous cell systems
DE102013111099B4 (de) 2013-10-08 2023-11-30 Eberhard Karls Universität Tübingen Medizinische Fakultät Permanente Genkorrektur mittels nukleotidmodifizierter messenger RNA
WO2015052231A2 (en) 2013-10-08 2015-04-16 Technical University Of Denmark Multiplex editing system
US20150098954A1 (en) 2013-10-08 2015-04-09 Elwha Llc Compositions and Methods Related to CRISPR Targeting
AU2014333776B2 (en) 2013-10-11 2021-01-28 Cellectis Methods and kits for detecting nucleic acid sequences of interest using DNA-binding protein domain
WO2015057671A1 (en) 2013-10-14 2015-04-23 The Broad Institute, Inc. Artificial transcription factors comprising a sliding domain and uses thereof
WO2015057834A1 (en) 2013-10-15 2015-04-23 The California Institute For Biomedical Research Peptidic chimeric antigen receptor t cell switches and uses thereof
CA2926698C (en) 2013-10-15 2021-06-22 The California Institute For Biomedical Research Chimeric antigen receptor t cell switches and uses thereof
CA2926078C (en) 2013-10-17 2021-11-16 Sangamo Biosciences, Inc. Delivery methods and compositions for nuclease-mediated genome engineering in hematopoietic stem cells
CN105899665B (zh) 2013-10-17 2019-10-22 桑格摩生物科学股份有限公司 用于核酸酶介导的基因组工程改造的递送方法和组合物
KR102251168B1 (ko) 2013-10-25 2021-05-13 셀렉티스 고 반복 모티프를 포함하는 dna 서열에 대한 효율적이고 특이적인 표적화를 위한 희소-절단 엔도뉴클레아제의 설계
WO2015065964A1 (en) 2013-10-28 2015-05-07 The Broad Institute Inc. Functional genomics using crispr-cas systems, compositions, methods, screens and applications thereof
WO2015066119A1 (en) 2013-10-30 2015-05-07 North Carolina State University Compositions and methods related to a type-ii crispr-cas system in lactobacillus buchneri
BR102014027448A8 (pt) 2013-11-04 2021-08-24 Dow Agrosciences Llc cassete de doador de polinucleotídeo, uso de uma planta, de uma parte de planta, ou de uma célula vegetal compreendendo o referido cassete, e método para integração direcionada do mesmo
CA2928666C (en) 2013-11-04 2023-05-23 Dow Agrosciences Llc Optimal maize loci for targeted genome modification
MX358066B (es) 2013-11-04 2018-08-03 Dow Agrosciences Llc Óptimos loci de soya.
EP3066109A4 (en) 2013-11-04 2017-11-29 Dow AgroSciences LLC Optimal soybean loci
AU2014341927B2 (en) 2013-11-04 2017-12-14 Corteva Agriscience Llc Optimal maize loci
US10752906B2 (en) 2013-11-05 2020-08-25 President And Fellows Of Harvard College Precise microbiota engineering at the cellular level
AU2014346559B2 (en) 2013-11-07 2020-07-09 Editas Medicine,Inc. CRISPR-related methods and compositions with governing gRNAs
WO2015077058A2 (en) 2013-11-08 2015-05-28 The Broad Institute, Inc. Compositions and methods for selecting a treatment for b-cell neoplasias
WO2015070193A1 (en) 2013-11-11 2015-05-14 Liu Oliver Compositions and methods for targeted gene disruption in prokaryotes
CA2929179A1 (en) 2013-11-11 2015-05-14 Sangamo Biosciences, Inc. Htt genetic repressor, viral vector, and uses thereof
DK3068881T3 (en) 2013-11-13 2019-04-15 Childrens Medical Center NUCLEASE-MEDIATED REGULATION OF GENEPRESSION
CA2930590C (en) 2013-11-15 2021-02-16 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Engineering neural stem cells using homologous recombination
AU2014348291A1 (en) 2013-11-18 2016-05-19 Yale University Compositions and methods of using transposons
CA2930877A1 (en) 2013-11-18 2015-05-21 Crispr Therapeutics Ag Crispr-cas system materials and methods
WO2015075056A1 (en) 2013-11-19 2015-05-28 Thermo Fisher Scientific Baltics Uab Programmable enzymes for isolation of specific dna fragments
US9074199B1 (en) 2013-11-19 2015-07-07 President And Fellows Of Harvard College Mutant Cas9 proteins
US10787684B2 (en) 2013-11-19 2020-09-29 President And Fellows Of Harvard College Large gene excision and insertion
EP3071592B1 (en) 2013-11-20 2021-01-06 Fondazione Telethon Artificial dna-binding proteins and uses thereof
EP3071686B1 (en) 2013-11-22 2020-07-22 Cellectis SA Method for generating batches of allogeneic t-cells with averaged potency
EP3071687B1 (en) 2013-11-22 2019-07-31 Cellectis Method of engineering chemotherapy drug resistant t-cells for immunotherapy
KR102507624B1 (ko) 2013-11-22 2023-03-09 미나 테라퓨틱스 리미티드 C/ebp 알파 짧은 활성화 rna 조성물 및 사용 방법
CN103642836A (zh) 2013-11-26 2014-03-19 苏州同善生物科技有限公司 一种基于crispr基因敲除技术建立脆性x综合症灵长类动物模型的方法
CN103614415A (zh) 2013-11-27 2014-03-05 苏州同善生物科技有限公司 一种基于crispr基因敲除技术建立肥胖症大鼠动物模型的方法
US10450586B2 (en) 2013-11-28 2019-10-22 Horizon Discovery Limited Somatic haploid human cell line
US9771403B2 (en) 2013-12-09 2017-09-26 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for treating hemophilia
RU2685914C1 (ru) 2013-12-11 2019-04-23 Регенерон Фармасьютикалс, Инк. Способы и композиции для направленной модификации генома
US20150166982A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 President And Fellows Of Harvard College Methods for correcting pi3k point mutations
KR20160089530A (ko) 2013-12-12 2016-07-27 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 Hbv 및 바이러스 질병 및 질환을 위한 crispr­cas 시스템 및 조성물의 전달,용도 및 치료적 적용
EP3080259B1 (en) 2013-12-12 2023-02-01 The Broad Institute, Inc. Engineering of systems, methods and optimized guide compositions with new architectures for sequence manipulation
MX2016007328A (es) 2013-12-12 2017-07-19 Broad Inst Inc Suministro, uso y aplicaciones terapeuticas de sistemas y composiciones crispr-cas para edicion del genoma.
CN106536729A (zh) 2013-12-12 2017-03-22 布罗德研究所有限公司 使用粒子递送组分靶向障碍和疾病的crispr‑cas系统和组合物的递送、用途和治疗应用
CN105899657A (zh) 2013-12-12 2016-08-24 布罗德研究所有限公司 用于改变基因产物表达的crispr-cas系统和方法、结构信息以及诱导型模块化cas酶
WO2015089364A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Crystal structure of a crispr-cas system, and uses thereof
WO2015089486A2 (en) 2013-12-12 2015-06-18 The Broad Institute Inc. Systems, methods and compositions for sequence manipulation with optimized functional crispr-cas systems
EP3080266B1 (en) 2013-12-12 2021-02-03 The Regents of The University of California Methods and compositions for modifying a single stranded target nucleic acid
AU2014362248A1 (en) 2013-12-12 2016-06-16 Massachusetts Institute Of Technology Compositions and methods of use of CRISPR-Cas systems in nucleotide repeat disorders
EP3080256B1 (en) 2013-12-13 2018-06-13 Cellectis Cas9 nuclease platform for microalgae genome engineering
JP6542226B2 (ja) 2013-12-13 2019-07-10 セレクティス ヌクレアーゼを使用して藻類形質転換細胞を選択する新しい方法
US20150191744A1 (en) 2013-12-17 2015-07-09 University Of Massachusetts Cas9 effector-mediated regulation of transcription, differentiation and gene editing/labeling
US9476065B2 (en) 2013-12-19 2016-10-25 Amyris, Inc. Methods for genomic integration
EP3985124A1 (en) 2013-12-26 2022-04-20 The General Hospital Corporation Multiplex guide rnas
DK3090062T3 (da) 2013-12-30 2020-09-21 Univ Pittsburgh Commonwealth Sys Higher Education Fusionsgener associeret med fremadskridende prostatakræft
CN103668472B (zh) 2013-12-31 2014-12-24 北京大学 利用CRISPR/Cas9系统构建真核基因敲除文库的方法
WO2015103153A1 (en) 2013-12-31 2015-07-09 The Regents Of The University Of California Cas9 crystals and methods of use thereof
CN106133141B (zh) 2014-01-08 2021-08-20 哈佛学院董事及会员团体 Rna引导的基因驱动
WO2015108993A1 (en) 2014-01-14 2015-07-23 Lam Therapeutics, Inc. Mutagenesis methods
US10774338B2 (en) 2014-01-16 2020-09-15 The Regents Of The University Of California Generation of heritable chimeric plant traits
CA2937429A1 (en) 2014-01-21 2015-07-30 Caixia Gao Modified plants
GB201400962D0 (en) 2014-01-21 2014-03-05 Kloehn Peter C Screening for target-specific affinity binders using RNA interference
JP2017503514A (ja) 2014-01-24 2017-02-02 ノースカロライナ ステート ユニバーシティーNorth Carolina State University Cas9ターゲッティングをガイドする配列に関する方法および組成物
JP6479024B2 (ja) 2014-01-24 2019-03-06 ザ チルドレンズ メディカル センター コーポレーション 抗体親和性の最適化のための高スループットマウスモデル
US10354746B2 (en) 2014-01-27 2019-07-16 Georgia Tech Research Corporation Methods and systems for identifying CRISPR/Cas off-target sites
CN104805078A (zh) 2014-01-28 2015-07-29 北京大学 用于高效基因组编辑的rna分子的设计、合成及其应用
US9850525B2 (en) 2014-01-29 2017-12-26 Agilent Technologies, Inc. CAS9-based isothermal method of detection of specific DNA sequence
US10233456B2 (en) 2014-01-30 2019-03-19 The Board Of Trustees Of The University Of Arkansas Method, vectors, cells, seeds and kits for stacking genes into a single genomic site
WO2015117041A1 (en) 2014-01-30 2015-08-06 Nair Ramesh B Gene modification-mediated methods and compositions for generating dominant traits in eukaryotic systems
GB201401707D0 (en) 2014-01-31 2014-03-19 Sec Dep For Health The Adeno-associated viral vectors
ES2787198T3 (es) 2014-01-31 2020-10-15 Factor Bioscience Inc ARN sintético para su uso en el tratamiento de la epidermólisis ampollosa distrófica
US10072066B2 (en) 2014-02-03 2018-09-11 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for treatment of a beta thalessemia
WO2015115903A1 (en) 2014-02-03 2015-08-06 Academisch Ziekenhuis Leiden H.O.D.N. Lumc Site-specific dna break-induced genome editing using engineered nucleases
EP3102722B1 (en) 2014-02-04 2020-08-26 Jumpcode Genomics, Inc. Genome fractioning
CN105960459B (zh) 2014-02-07 2021-04-20 非营利性组织佛兰芒综合大学生物技术研究所 抑制neat1用于治疗实体肿瘤
PL3105328T3 (pl) 2014-02-11 2020-10-19 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Umożliwiana przez CRISPR multipleksowa modyfikacja genomu
CA2939621C (en) 2014-02-13 2019-10-15 Takara Bio Usa, Inc. Methods of depleting a target molecule from an initial collection of nucleic acids, and compositions and kits for practicing the same
HUE041497T2 (hu) 2014-02-14 2019-05-28 Cellectis Immunsejteken és patológiás sejteken egyaránt jelen lévõ antigént célzó génmódosított sejtek immunterápia célra
MX2016010781A (es) 2014-02-18 2017-02-15 Univ Duke Composiciones para la inactivacion de la replicacion de virus y metodos de fabricacion y uso de las mismas.
US10041135B2 (en) 2014-02-20 2018-08-07 Dsm Ip Assets B.V. Phage insensitive Streptococcus thermophilus
EP3107552B1 (en) 2014-02-21 2018-03-28 Cellectis Method for in situ inhibition of regulatory t cells
US10370680B2 (en) 2014-02-24 2019-08-06 Sangamo Therapeutics, Inc. Method of treating factor IX deficiency using nuclease-mediated targeted integration
WO2015127428A1 (en) 2014-02-24 2015-08-27 Massachusetts Institute Of Technology Methods for in vivo genome editing
WO2015129686A1 (ja) 2014-02-25 2015-09-03 国立研究開発法人 農業生物資源研究所 標的dnaに変異が導入された植物細胞、及びその製造方法
WO2015131101A1 (en) 2014-02-27 2015-09-03 Monsanto Technology Llc Compositions and methods for site directed genomic modification
CN103820441B (zh) 2014-03-04 2017-05-17 黄行许 CRISPR‑Cas9特异性敲除人CTLA4基因的方法以及用于特异性靶向CTLA4基因的sgRNA
CN103820454B (zh) 2014-03-04 2016-03-30 上海金卫生物技术有限公司 CRISPR-Cas9特异性敲除人PD1基因的方法以及用于特异性靶向PD1基因的sgRNA
EP3613854A1 (en) 2014-03-05 2020-02-26 National University Corporation Kobe University Genomic sequence modification method for specifically converting nucleic acid bases of targeted dna sequence, and molecular complex for use in same
EP3957735A1 (en) 2014-03-05 2022-02-23 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating usher syndrome and retinitis pigmentosa
WO2015138510A1 (en) 2014-03-10 2015-09-17 Editas Medicine., Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating leber's congenital amaurosis 10 (lca10)
KR102228828B1 (ko) 2014-03-11 2021-03-16 셀렉티스 동종이형 이식에 양립성인 t-세포들을 만들어내는 방법
ES2821149T3 (es) 2014-03-12 2021-04-23 Prec Biosciences Inc Eliminación del exón del gen de la distrofina mediante nucleasas modificadas genéticamente
WO2015138870A2 (en) 2014-03-13 2015-09-17 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Compositions and methods for targeted epigenetic modification
RS65213B1 (sr) 2014-03-14 2024-03-29 Cibus Us Llc Postupci i kompozicije za povećanje efikasnosti ciljane modifikacije gena korišćenjem reparacije gena posredovane oligonukleotidima
US20170088845A1 (en) 2014-03-14 2017-03-30 The Regents Of The University Of California Vectors and methods for fungal genome engineering by crispr-cas9
US9624498B2 (en) 2014-03-18 2017-04-18 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for regulation of zinc finger protein expression
EP3126498A4 (en) 2014-03-20 2017-08-23 Université Laval Crispr-based methods and products for increasing frataxin levels and uses thereof
WO2015143177A1 (en) 2014-03-21 2015-09-24 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Genome editing without nucleases
ES2870592T3 (es) 2014-03-24 2021-10-27 Immco Diagnostics Inc Detección mejorada de anticuerpos antinucleares y diagnóstico para trastornos autoinmunes sistémicos y no sistémicos
CA2943775A1 (en) 2014-03-25 2015-10-01 Ginkgo Bioworks, Inc. Methods and genetic systems for cell engineering
EP3129484A1 (en) 2014-03-25 2017-02-15 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating hiv infection and aids
EP3981876A1 (en) 2014-03-26 2022-04-13 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating sickle cell disease
WO2015148860A1 (en) 2014-03-26 2015-10-01 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating beta-thalassemia
EP3122877B1 (en) 2014-03-26 2023-03-22 University of Maryland, College Park Targeted genome editing in zygotes of domestic large animals
CA2944141C (en) 2014-03-28 2023-03-28 Aposense Ltd. Compounds and methods for trans-membrane delivery of molecules
US9993563B2 (en) 2014-03-28 2018-06-12 Aposense Ltd. Compounds and methods for trans-membrane delivery of molecules
WO2015153791A1 (en) 2014-04-01 2015-10-08 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus type 2 (hsv-2)
WO2015153789A1 (en) 2014-04-01 2015-10-08 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus type 1 (hsv-1)
WO2015153760A2 (en) 2014-04-01 2015-10-08 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for prevention or treatment of a nervous system disorder
US10507232B2 (en) 2014-04-02 2019-12-17 University Of Florida Research Foundation, Incorporated Materials and methods for the treatment of latent viral infection
EP3126495A1 (en) 2014-04-02 2017-02-08 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating primary open angle glaucoma
CN103911376B (zh) 2014-04-03 2017-02-15 黄行许 CRISPR‑Cas9靶向敲除乙肝病毒cccDNA及其特异性sgRNA
WO2015153940A1 (en) 2014-04-03 2015-10-08 Massachusetts Institute Of Technology Methods and compositions for the production of guide rna
JP2017512481A (ja) 2014-04-08 2017-05-25 ノースカロライナ ステート ユニバーシティーNorth Carolina State University Crispr関連遺伝子を用いた、rna依存性の転写抑制のための方法および組成物
EP3129485B2 (en) 2014-04-09 2022-12-21 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating cystic fibrosis
WO2015157534A1 (en) 2014-04-10 2015-10-15 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for using argonaute to modify a single stranded target nucleic acid
US10765728B2 (en) 2014-04-11 2020-09-08 Cellectis Method for generating immune cells resistant to arginine and/or tryptophan depleted microenvironment
CN103923911B (zh) 2014-04-14 2016-06-08 上海金卫生物技术有限公司 CRISPR-Cas9特异性敲除人CCR5基因的方法以及用于特异性靶向CCR5基因的sgRNA
DK3132034T3 (da) 2014-04-14 2020-10-19 Nemesis Bioscience Ltd Terapeutikum
KR102406585B1 (ko) 2014-04-14 2022-06-07 맥스시티 인코포레이티드 게놈 dna를 변형하기 위한 방법 및 조성물
GB201406968D0 (en) 2014-04-17 2014-06-04 Green Biologics Ltd Deletion mutants
GB201406970D0 (en) 2014-04-17 2014-06-04 Green Biologics Ltd Targeted mutations
SG11201608701QA (en) 2014-04-18 2016-11-29 Editas Medicine Inc Crispr-cas-related methods, compositions and components for cancer immunotherapy
CN105039399A (zh) 2014-04-23 2015-11-11 复旦大学 多能干细胞-遗传性心肌病心肌细胞及其制备方法
KR101823661B1 (ko) 2014-04-24 2018-01-30 기초과학연구원 마이크로 상동 기반의 유전자 녹아웃을 위한 뉴클레아제 표적 서열을 확인하는 방법
CA2945393C (en) 2014-04-24 2021-03-23 Board Of Regents, The University Of Texas System Application of induced pluripotent stem cells to generate adoptive cell therapy products
US9522936B2 (en) 2014-04-24 2016-12-20 Sangamo Biosciences, Inc. Engineered transcription activator like effector (TALE) proteins
BR122023023211A2 (pt) 2014-04-28 2024-01-23 Recombinetics, Inc. Método de fazer edições de genes multiplex em uma célula de vertebrado ou de embrião primário não-humano
WO2015168158A1 (en) 2014-04-28 2015-11-05 Fredy Altpeter Targeted genome editing to modify lignin biosynthesis and cell wall composition
EP3136842A4 (en) 2014-04-28 2017-11-29 Dow AgroSciences LLC Haploid maize transformation
GB2540694A (en) 2014-04-29 2017-01-25 Seattle Children's Hospital (Dba Seattle Children's Res Institute) CCR5 disruption of cells expressing anti-hiv chimeric antigen receptor (CAR) derived from broadly neutralizing antibodies
WO2015165276A1 (zh) 2014-04-30 2015-11-05 清华大学 利用tale转录抑制子在哺乳动物细胞中模块化构建合成基因线路的试剂盒
CN104178506B (zh) 2014-04-30 2017-03-01 清华大学 Taler蛋白通过空间位阻发挥转录抑制作用及其应用
WO2015168404A1 (en) 2014-04-30 2015-11-05 Massachusetts Institute Of Technology Toehold-gated guide rna for programmable cas9 circuitry with rna input
US10563207B2 (en) 2014-04-30 2020-02-18 Tsinghua University Modular construction of synthetic gene circuits in mammalian cells using TALE transcriptional repressors
US20170037431A1 (en) 2014-05-01 2017-02-09 University Of Washington In vivo Gene Engineering with Adenoviral Vectors
GB201407852D0 (en) 2014-05-02 2014-06-18 Iontas Ltd Preparation of libraries od protein variants expressed in eukaryotic cells and use for selecting binding molecules
WO2015171603A1 (en) 2014-05-06 2015-11-12 Two Blades Foundation Methods for producing plants with enhanced resistance to oomycete pathogens
US11110154B2 (en) 2014-05-08 2021-09-07 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for treating Huntington's Disease
EP3140403A4 (en) 2014-05-09 2017-12-20 Université Laval Prevention and treatment of alzheimer's disease by genome editing using the crispr/cas system
US10487336B2 (en) 2014-05-09 2019-11-26 The Regents Of The University Of California Methods for selecting plants after genome editing
AU2015255656A1 (en) 2014-05-09 2016-11-10 Assembly Biosciences, Inc. Methods and compositions for treating hepatitis B virus infections
WO2015175642A2 (en) 2014-05-13 2015-11-19 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for prevention or treatment of a disease
CN104004782B (zh) 2014-05-16 2016-06-08 安徽省农业科学院水稻研究所 一种延长水稻生育期的育种方法
CN103981212B (zh) 2014-05-16 2016-06-01 安徽省农业科学院水稻研究所 将黄色颖壳的水稻品种的颖壳颜色改为褐色的育种方法
CN104017821B (zh) 2014-05-16 2016-07-06 安徽省农业科学院水稻研究所 定向编辑颖壳颜色决定基因OsCHI创制褐壳水稻材料的方法
CN103981211B (zh) 2014-05-16 2016-07-06 安徽省农业科学院水稻研究所 一种创制闭颖授粉水稻材料的育种方法
WO2015173436A1 (en) 2014-05-16 2015-11-19 Vrije Universiteit Brussel Genetic correction of myotonic dystrophy type 1
CA2949697A1 (en) 2014-05-20 2015-11-26 Regents Of The University Of Minnesota Method for editing a genetic sequence
CA2852593A1 (en) 2014-05-23 2015-11-23 Universite Laval Methods for producing dopaminergic neurons and uses thereof
WO2015183885A1 (en) 2014-05-27 2015-12-03 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Methods and compositions for perturbing gene expression in hematopoietic stem cell lineages in vivo
JP2017516500A (ja) 2014-05-28 2017-06-22 ツールゲン インコーポレイテッドToolgen Incorporated 標的特異的ヌクレアーゼを用いた標的dnaの敏感な検出方法
WO2015184268A1 (en) 2014-05-30 2015-12-03 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Compositions and methods of delivering treatments for latent viral infections
WO2015188065A1 (en) 2014-06-05 2015-12-10 Sangamo Biosciences, Inc. Methods and compositions for nuclease design
WO2015188135A1 (en) 2014-06-06 2015-12-10 The California Institute For Biomedical Research Constant region antibody fusion proteins and compositions thereof
US20170198307A1 (en) 2014-06-06 2017-07-13 President And Fellows Of Harvard College Methods for targeted modification of genomic dna
PL3152312T3 (pl) 2014-06-06 2020-08-10 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Sposoby i kompozycje do modyfikowania docelowego locus
CN104004778B (zh) 2014-06-06 2016-03-02 重庆高圣生物医药有限责任公司 含有CRISPR/Cas9系统的靶向敲除载体及其腺病毒和应用
US20170327577A1 (en) 2014-06-06 2017-11-16 The California Institute For Biomedical Research Methods of constructing amino terminal immunoglobulin fusion proteins and compositions thereof
WO2015188191A1 (en) 2014-06-06 2015-12-10 Wong Wilson W Dna recombinase circuits for logical control of gene expression
US11274302B2 (en) 2016-08-17 2022-03-15 Diacarta Ltd Specific synthetic chimeric Xenonucleic acid guide RNA; s(XNA-gRNA) for enhancing CRISPR mediated genome editing efficiency
CA2951707A1 (en) 2014-06-10 2015-12-17 Massachusetts Institute Of Technology Method for gene editing
ES2937642T3 (es) 2014-06-11 2023-03-30 Univ Duke Composiciones y métodos para el control de flujo rápido y dinámico usando válvulas metabólicas sintéticas
EP3155098A4 (en) 2014-06-11 2018-01-03 Howard, Tom E. FACTOR VIII MUTATION REPAIR AND TOLERANCE INDUCTION AND RELATED CDNAs, COMPOSITIONS, METHODS AND SYSTEMS
US11584936B2 (en) 2014-06-12 2023-02-21 King Abdullah University Of Science And Technology Targeted viral-mediated plant genome editing using CRISPR /Cas9
WO2015191911A2 (en) 2014-06-12 2015-12-17 Clontech Laboratories, Inc. Protein enriched microvesicles and methods of making and using the same
WO2015195547A1 (en) 2014-06-16 2015-12-23 University Of Washington Methods for controlling stem cell potential and for gene editing in stem cells
EP3674408A1 (en) 2014-06-16 2020-07-01 The Johns Hopkins University Compositions and methods for the expression of crispr guide rnas
EP3157328B1 (en) 2014-06-17 2021-08-04 Poseida Therapeutics, Inc. A method for directing proteins to specific loci in the genome and uses thereof
CA2952906A1 (en) 2014-06-20 2015-12-23 Cellectis Potatoes with reduced granule-bound starch synthase
PT3155099T (pt) 2014-06-23 2018-04-20 Regeneron Pharma Montagem de dna mediada por nuclease
AU2015280069B2 (en) 2014-06-23 2021-08-12 The General Hospital Corporation Genomewide unbiased identification of dsbs evaluated by sequencing (guide-seq)
WO2015200555A2 (en) 2014-06-25 2015-12-30 Caribou Biosciences, Inc. Rna modification to engineer cas9 activity
MX2016017317A (es) 2014-06-26 2017-08-24 Regeneron Pharma Metodos y composiciones para modificaciones geneticas dirigidas y metodos de uso.
GB201411344D0 (en) 2014-06-26 2014-08-13 Univ Leicester Cloning
WO2016001988A1 (ja) 2014-06-30 2016-01-07 日産自動車株式会社 内燃機関
WO2016001978A1 (ja) 2014-06-30 2016-01-07 花王株式会社 冷却用貼付シート
WO2016004010A1 (en) 2014-07-01 2016-01-07 Board Of Regents, The University Of Texas System Regulated gene expression from viral vectors
EP3167071B1 (en) 2014-07-09 2020-10-07 Gen9, Inc. Compositions and methods for site-directed dna nicking and cleaving
EP2966170A1 (en) 2014-07-10 2016-01-13 Heinrich-Pette-Institut Leibniz-Institut für experimentelle Virologie-Stiftung bürgerlichen Rechts - HBV inactivation
AU2015288157A1 (en) 2014-07-11 2017-01-19 E. I. Du Pont De Nemours And Company Compositions and methods for producing plants resistant to glyphosate herbicide
CN106795524A (zh) 2014-07-11 2017-05-31 先锋国际良种公司 使用向导rna/cas内切核酸酶系统改变农学性状及其使用方法
US11254933B2 (en) 2014-07-14 2022-02-22 The Regents Of The University Of California CRISPR/Cas transcriptional modulation
CN104109687A (zh) 2014-07-14 2014-10-22 四川大学 运动发酵单胞菌CRISPR-Cas9系统的构建与应用
MA40253A (fr) 2014-07-15 2017-05-24 Juno Therapeutics Inc Cellules modifiées pour thérapie cellulaire adoptive
WO2016011428A1 (en) 2014-07-17 2016-01-21 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Methods of treating cells containing fusion genes
US9944933B2 (en) 2014-07-17 2018-04-17 Georgia Tech Research Corporation Aptamer-guided gene targeting
US10975406B2 (en) 2014-07-18 2021-04-13 Massachusetts Institute Of Technology Directed endonucleases for repeatable nucleic acid cleavage
US20160053304A1 (en) 2014-07-18 2016-02-25 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods Of Depleting Target Sequences Using CRISPR
US20160053272A1 (en) 2014-07-18 2016-02-25 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods Of Modifying A Sequence Using CRISPR
TWI750110B (zh) 2014-07-21 2021-12-21 瑞士商諾華公司 使用人類化抗-bcma嵌合抗原受體治療癌症
US10457969B2 (en) 2014-07-21 2019-10-29 Illumina, Inc. Polynucleotide enrichment using CRISPR-Cas systems
CN106415742B (zh) 2014-07-22 2019-07-26 松下知识产权经营株式会社 复合磁性材料、使用其的线圈部件以及复合磁性材料的制造方法
WO2016012552A1 (en) 2014-07-24 2016-01-28 Dsm Ip Assets B.V. Phage resistant lactic acid bacteria
US9816074B2 (en) 2014-07-25 2017-11-14 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for modulating nuclease-mediated genome engineering in hematopoietic stem cells
JP2017525347A (ja) 2014-07-25 2017-09-07 ベーリンガー インゲルハイム インターナショナル ゲゼルシャフト ミット ベシュレンクテル ハフツング iPS細胞への再プログラミングの増強
WO2016014837A1 (en) 2014-07-25 2016-01-28 Sangamo Biosciences, Inc. Gene editing for hiv gene therapy
EP3194600B1 (en) 2014-07-26 2019-08-28 Consiglio Nazionale Delle Ricerche Compositions and methods for treatment of muscular dystrophy
FR3024464A1 (fr) 2014-07-30 2016-02-05 Centre Nat Rech Scient Ciblage de vecteurs integratifs non-viraux dans les sequences d'adn nucleolaires chez les eucaryotes
WO2016019144A2 (en) 2014-07-30 2016-02-04 Sangamo Biosciences, Inc. Gene correction of scid-related genes in hematopoietic stem and progenitor cells
US10077453B2 (en) 2014-07-30 2018-09-18 President And Fellows Of Harvard College CAS9 proteins including ligand-dependent inteins
US9850521B2 (en) 2014-08-01 2017-12-26 Agilent Technologies, Inc. In vitro assay buffer for Cas9
US20160076093A1 (en) 2014-08-04 2016-03-17 University Of Washington Multiplex homology-directed repair
EP2982758A1 (en) 2014-08-04 2016-02-10 Centre Hospitalier Universitaire Vaudois (CHUV) Genome editing for the treatment of huntington's disease
EP3194578B1 (en) 2014-08-06 2021-03-10 College of Medicine Pochon Cha University Industry-Academic Cooperation Foundation Immune-compatible cells created by nuclease-mediated editing of genes encoding hla
JP6715419B2 (ja) 2014-08-06 2020-07-01 トゥールジェン インコーポレイテッド カンピロバクター・ジェジュニcrispr/casシステムに由来するrgenを使用したゲノム編集
US11299732B2 (en) 2014-08-07 2022-04-12 The Rockefeller University Compositions and methods for transcription-based CRISPR-Cas DNA editing
US9932566B2 (en) 2014-08-07 2018-04-03 Agilent Technologies, Inc. CIS-blocked guide RNA
WO2016025469A1 (en) 2014-08-11 2016-02-18 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Prevention of muscular dystrophy by crispr/cas9-mediated gene editing
US10513711B2 (en) 2014-08-13 2019-12-24 Dupont Us Holding, Llc Genetic targeting in non-conventional yeast using an RNA-guided endonuclease
WO2016025759A1 (en) 2014-08-14 2016-02-18 Shen Yuelei Dna knock-in system
CN104178461B (zh) 2014-08-14 2017-02-01 北京蛋白质组研究中心 携带cas9的重组腺病毒及其应用
US9879270B2 (en) 2014-08-15 2018-01-30 Wisconsin Alumni Research Foundation Constructs and methods for genome editing and genetic engineering of fungi and protists
WO2016028682A1 (en) 2014-08-17 2016-02-25 The Broad Institute Inc. Genome editing using cas9 nickases
WO2016028887A1 (en) 2014-08-19 2016-02-25 Pacific Biosciences Of California, Inc. Compositions and methods for enrichment of nucleic acids
CN107075546B (zh) 2014-08-19 2021-08-31 哈佛学院董事及会员团体 用于对核酸探测并作图的rna-引导的系统
US20190045758A1 (en) 2014-08-20 2019-02-14 Shanghai Institutes For Biological Sciences, Chinese Academy Of Sciences Biomarker and Therapeutic Target for Triple Negative Breast Cancer
EP3186368B1 (en) 2014-08-25 2020-01-15 Geneweave Biosciences Inc. Non-replicative transduction particles and transduction particle-based reporter systems
CA2958767A1 (en) 2014-08-26 2016-03-03 The Regents Of The University Of California Hypersensitive aba receptors
EP3186376B1 (en) 2014-08-27 2019-03-20 Caribou Biosciences, Inc. Methods for increasing cas9-mediated engineering efficiency
WO2016033298A1 (en) 2014-08-28 2016-03-03 North Carolina State University Novel cas9 proteins and guiding features for dna targeting and genome editing
US10570418B2 (en) 2014-09-02 2020-02-25 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for RNA-directed target DNA modification
DK3189140T3 (en) 2014-09-05 2020-02-03 Univ Vilnius Programmerbar RNA-fragmentering ved hjælp af TYPE III-A CRISPR-Cas-systemet af Streptococcus thermophilus
US11219670B2 (en) 2014-09-05 2022-01-11 The Johns Hopkins University Targeting CAPN9/CAPNS2 activity as a therapeutic strategy for the treatment of myofibroblast differentiation and associated pathologies
WO2016040594A1 (en) 2014-09-10 2016-03-17 The Regents Of The University Of California Reconstruction of ancestral cells by enzymatic recording
CN108064129A (zh) 2014-09-12 2018-05-22 纳幕尔杜邦公司 玉米和大豆中复合性状基因座的位点特异性整合位点的产生和使用方法
EP3878948A1 (en) 2014-09-16 2021-09-15 Sangamo Therapeutics, Inc. Methods and compositions for nuclease-mediated genome engineering and correction in hematopoietic stem cells
EP3194401B1 (en) 2014-09-16 2020-10-21 Gilead Sciences, Inc. Solid forms of a toll-like receptor modulator
WO2016049251A1 (en) 2014-09-24 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Delivery, use and therapeutic applications of the crispr-cas systems and compositions for modeling mutations in leukocytes
WO2016049163A2 (en) 2014-09-24 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Use and production of chd8+/- transgenic animals with behavioral phenotypes characteristic of autism spectrum disorder
ES2856090T3 (es) 2014-09-24 2021-09-27 Hope City Variantes de vectores de virus adenoasociados para la edición genómica de alta eficacia y sus métodos
WO2016049024A2 (en) 2014-09-24 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Delivery, use and therapeutic applications of the crispr-cas systems and compositions for modeling competition of multiple cancer mutations in vivo
WO2016046635A1 (en) 2014-09-25 2016-03-31 Institut Pasteur Methods for characterizing human papillomavirus associated cervical lesions
WO2016049258A2 (en) 2014-09-25 2016-03-31 The Broad Institute Inc. Functional screening with optimized functional crispr-cas systems
WO2016054225A1 (en) 2014-09-30 2016-04-07 Stc.Unm Plasmid delivery in the treatment of cancer and other disease states
WO2016054326A1 (en) 2014-10-01 2016-04-07 The General Hospital Corporation Methods for increasing efficiency of nuclease-induced homology-directed repair
WO2016057850A1 (en) 2014-10-09 2016-04-14 Seattle Children' S Hospital (Dba Seattle Children' S Research Institute) Long poly (a) plasmids and methods for introduction of long poly (a) sequences into the plasmid
CN107002078A (zh) 2014-10-09 2017-08-01 生命技术公司 Crispr寡核苷酸和基因剪辑
CA2964234A1 (en) 2014-10-10 2016-04-14 Massachusetts Eye And Ear Infirmary Efficient delivery of therapeutic molecules in vitro and in vivo
AU2015330699B2 (en) 2014-10-10 2021-12-02 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for promoting homology directed repair
WO2016061073A1 (en) 2014-10-14 2016-04-21 Memorial Sloan-Kettering Cancer Center Composition and method for in vivo engineering of chromosomal rearrangements
US10428310B2 (en) 2014-10-15 2019-10-01 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods and compositions for generating or maintaining pluripotent cells
CN107208086A (zh) 2014-10-17 2017-09-26 霍华德休斯医学研究所 基因组探针
CN104342457A (zh) 2014-10-17 2015-02-11 杭州师范大学 一种将外源基因定点整合到靶标基因的方法
CN107027313B (zh) 2014-10-17 2021-09-07 宾州研究基金会 用于多元rna引导的基因组编辑和其它rna技术的方法和组合物
US10793922B2 (en) 2014-10-20 2020-10-06 Envirologix Inc. Compositions and methods for detecting an RNA virus
US20170247762A1 (en) 2014-10-27 2017-08-31 The Board Institute Inc. Compositions, methods and use of synthetic lethal screening
WO2016069910A1 (en) 2014-10-29 2016-05-06 Massachusetts Eye And Ear Infirmary Methods for efficient delivery of therapeutic molecules in vitro and in vivo
MA40880A (fr) 2014-10-30 2017-09-05 Temple Univ Of The Commonwealth Éradication guidée par l'arn du virus jc humain et d'autres polyomavirus
WO2016069282A1 (en) 2014-10-31 2016-05-06 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Altering gene expression in modified t cells and uses thereof
JP6788584B2 (ja) 2014-10-31 2020-11-25 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー Crisprについての超並列コンビナトリアル遺伝学
US9816080B2 (en) 2014-10-31 2017-11-14 President And Fellows Of Harvard College Delivery of CAS9 via ARRDC1-mediated microvesicles (ARMMs)
CN104404036B (zh) 2014-11-03 2017-12-01 赛业(苏州)生物科技有限公司 基于CRISPR/Cas9技术的条件性基因敲除方法
US10435697B2 (en) 2014-11-03 2019-10-08 Nanyang Technological University Recombinant expression system that senses pathogenic microorganisms
CN104504304B (zh) 2014-11-03 2017-08-25 深圳先进技术研究院 一种成簇的规律间隔的短回文重复序列识别方法及装置
DK3216867T3 (da) 2014-11-04 2020-06-22 Univ Kobe Nat Univ Corp Fremgangsmåde til at modificere genomsekvens for at introducere specifik mutation i tilsigtet dna-sekvens ved base-fjernelsesreaktion og molekylekompleks anvendt dertil
US20180291382A1 (en) 2014-11-05 2018-10-11 The Regents Of The University Of California Methods for Autocatalytic Genome Editing and Neutralizing Autocatalytic Genome Editing
EA038321B1 (ru) 2014-11-06 2021-08-09 Е.И. Дюпон Де Немур Энд Компани Опосредуемая пептидом доставка направляемой рнк эндонуклеазы в клетки
US11680268B2 (en) 2014-11-07 2023-06-20 Editas Medicine, Inc. Methods for improving CRISPR/Cas-mediated genome-editing
WO2016077273A1 (en) 2014-11-11 2016-05-19 Q Therapeutics, Inc. Engineering mesenchymal stem cells using homologous recombination
AU2015346514B2 (en) 2014-11-11 2021-04-08 Illumina, Inc. Polynucleotide amplification using CRISPR-Cas systems
EP3219810B1 (en) 2014-11-14 2022-01-05 Institute for Basic Science Method for detecting off-target site of genetic scissors in genome
DK3218490T3 (en) 2014-11-15 2019-02-18 Zumutor Biologics Inc DNA BINDING DOMAIN OF CRISPR SYSTEM FOR PRODUCING NON-FUCOSYLED AND PARTICULAR FUCOSYLED PROTEINS
WO2016080097A1 (ja) 2014-11-17 2016-05-26 国立大学法人東京医科歯科大学 簡便で高効率の遺伝子改変非ヒト哺乳動物の作製方法
WO2016080795A1 (ko) 2014-11-19 2016-05-26 기초과학연구원 두 개의 벡터로부터 발현된 cas9 단백질을 이용한 유전자 발현 조절 방법
WO2016081924A1 (en) 2014-11-20 2016-05-26 Duke University Compositions, systems and methods for cell therapy
US10227661B2 (en) 2014-11-21 2019-03-12 GeneWeave Biosciences, Inc. Sequence-specific detection and phenotype determination
KR102531016B1 (ko) 2014-11-21 2023-05-10 리제너론 파마슈티칼스 인코포레이티드 쌍 형성된 가이드 rna를 사용하는 표적화된 유전자 변형을 위한 방법 및 조성물
US20180334732A1 (en) 2014-11-25 2018-11-22 Drexel University Compositions and methods for hiv quasi-species excision from hiv-1-infected patients
WO2016084088A1 (en) 2014-11-26 2016-06-02 Ramot At Tel-Aviv University Ltd. Targeted elimination of bacterial genes
WO2016082135A1 (zh) 2014-11-27 2016-06-02 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 一种利用定点切割系统对猪h11位点定点插入的方法
CN105695485B (zh) 2014-11-27 2020-02-21 中国科学院上海生命科学研究院 一种用于丝状真菌Crispr-Cas系统的Cas9编码基因及其应用
GB201421096D0 (en) 2014-11-27 2015-01-14 Imp Innovations Ltd Genome editing methods
US10883111B2 (en) 2014-11-27 2021-01-05 Danziger Innovations Ltd. Nucleic acid constructs for genome editing
US10479997B2 (en) 2014-12-01 2019-11-19 Novartis Ag Compositions and methods for diagnosis and treatment of prostate cancer
US20170266320A1 (en) 2014-12-01 2017-09-21 President And Fellows Of Harvard College RNA-Guided Systems for In Vivo Gene Editing
EP3227447B1 (en) 2014-12-03 2024-04-24 Agilent Technologies, Inc. Guide rna with chemical modifications
CN104450774A (zh) 2014-12-04 2015-03-25 中国农业科学院作物科学研究所 一种大豆CRISPR/Cas9体系的构建及其在大豆基因修饰中的应用
CN107208079B (zh) 2014-12-05 2021-06-29 应用干细胞有限公司 整合转基因的位点定向crispr/重组酶组合物和方法
CN104531705A (zh) 2014-12-09 2015-04-22 中国农业大学 利用CRISPR-Cas9系统敲除动物myostatin基因的方法
CN104531704B (zh) 2014-12-09 2019-05-21 中国农业大学 利用CRISPR-Cas9系统敲除动物FGF5基因的方法
AU2015360502A1 (en) 2014-12-10 2017-06-29 Regents Of The University Of Minnesota Genetically modified cells, tissues, and organs for treating disease
JP6814155B2 (ja) 2014-12-12 2021-01-13 ジュー,ジェイムズ 対象とする細胞を選択的に除去する方法及び組成物
EP3230452A1 (en) 2014-12-12 2017-10-18 The Broad Institute Inc. Dead guides for crispr transcription factors
WO2016094880A1 (en) 2014-12-12 2016-06-16 The Broad Institute Inc. Delivery, use and therapeutic applications of crispr systems and compositions for genome editing as to hematopoietic stem cells (hscs)
WO2016094874A1 (en) 2014-12-12 2016-06-16 The Broad Institute Inc. Escorted and functionalized guides for crispr-cas systems
JP6997623B2 (ja) 2014-12-12 2022-02-04 エム. ウルフ、トッド オリゴヌクレオチドを利用して細胞内の核酸を編集するための組成物および方法
EP3985115A1 (en) 2014-12-12 2022-04-20 The Broad Institute, Inc. Protected guide rnas (pgrnas)
CN104480144B (zh) 2014-12-12 2017-04-12 武汉大学 用于艾滋病基因治疗的CRISPR/Cas9重组慢病毒载体及其慢病毒
EP3234150A1 (en) 2014-12-16 2017-10-25 Danisco US Inc. Fungal genome modification systems and methods of use
JP6842417B2 (ja) 2014-12-16 2021-03-17 シー3ジェイ セラピューティクス インコーポレイテッド インビトロウイルスゲノム工学のための組成物及びその方法
EP3233095A2 (en) 2014-12-17 2017-10-25 Cellectis INHIBITORY CHIMERIC ANTIGEN RECEPTOR (iCAR OR N-CAR) EXPRESSING NON-T CELL TRANSDUCTION DOMAIN
CA2971391C (en) 2014-12-17 2023-05-09 E. I. Du Pont De Nemours And Company Compositions and methods for efficient gene editing in e. coli using guide rna/cas endonuclease systems in combination with circular polynucleotide modification templates.
EP3712269A1 (en) 2014-12-17 2020-09-23 ProQR Therapeutics II B.V. Targeted rna editing
WO2016097751A1 (en) 2014-12-18 2016-06-23 The University Of Bath Method of cas9 mediated genome engineering
US9840702B2 (en) 2014-12-18 2017-12-12 Integrated Dna Technologies, Inc. CRISPR-based compositions and methods of use
CN104745626B (zh) 2014-12-19 2018-05-01 中国航天员科研训练中心 一种条件性基因敲除动物模型的快速构建方法及应用
EP3234192B1 (en) 2014-12-19 2021-07-14 The Broad Institute, Inc. Unbiased identification of double-strand breaks and genomic rearrangement by genome-wide insert capture sequencing
JP6947638B2 (ja) 2014-12-20 2021-10-13 アーク バイオ, エルエルシー Crispr/cas系タンパク質を使用する核酸の標的化枯渇、富化および分割のための組成物および方法
CN104560864B (zh) 2014-12-22 2017-08-11 中国科学院微生物研究所 利用CRISPR‑Cas9系统构建的敲除IFN‑β基因的293T细胞系
US10190106B2 (en) 2014-12-22 2019-01-29 Univesity Of Massachusetts Cas9-DNA targeting unit chimeras
US11053271B2 (en) 2014-12-23 2021-07-06 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for nucleic acid integration
WO2016106236A1 (en) 2014-12-23 2016-06-30 The Broad Institute Inc. Rna-targeting system
CN104651398A (zh) 2014-12-24 2015-05-27 杭州师范大学 利用CRISPR-Cas9特异敲出microRNA基因家族的方法
US20170369855A1 (en) 2014-12-24 2017-12-28 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Systems and methods for genome modification and regulation
CA2970370A1 (en) 2014-12-24 2016-06-30 Massachusetts Institute Of Technology Crispr having or associated with destabilization domains
AU2015101792A4 (en) 2014-12-24 2016-01-28 Massachusetts Institute Of Technology Engineering of systems, methods and optimized enzyme and guide scaffolds for sequence manipulation
US10863730B2 (en) 2014-12-26 2020-12-15 Riken Gene knockout method
CN104498493B (zh) 2014-12-30 2017-12-26 武汉大学 CRISPR/Cas9特异性敲除乙型肝炎病毒的方法以及用于特异性靶向HBV DNA的gRNA
WO2016108926A1 (en) 2014-12-30 2016-07-07 The Broad Institute Inc. Crispr mediated in vivo modeling and genetic screening of tumor growth and metastasis
US20180002706A1 (en) 2014-12-30 2018-01-04 University Of South Florida Methods and compositions for cloning into large vectors
WO2016109840A2 (en) 2014-12-31 2016-07-07 Synthetic Genomics, Inc. Compositions and methods for high efficiency in vivo genome editing
CN104651399B (zh) 2014-12-31 2018-11-16 广西大学 一种利用CRISPR/Cas系统在猪胚胎细胞中实现基因敲除的方法
US11396665B2 (en) 2015-01-06 2022-07-26 Dsm Ip Assets B.V. CRISPR-CAS system for a filamentous fungal host cell
CN104651392B (zh) 2015-01-06 2018-07-31 华南农业大学 一种利用CRISPR/Cas9系统定点突变P/TMS12-1获得温敏不育系的方法
EP3242949B1 (en) 2015-01-06 2021-11-03 DSM IP Assets B.V. A crispr-cas system for a yeast host cell
US11185596B2 (en) 2015-01-06 2021-11-30 Industry-Academic Cooperation Foundation, Yonsei University Endonuclease targeting blood coagulation factor VIII gene and composition for treating hemophilia comprising same
WO2016110511A1 (en) 2015-01-06 2016-07-14 Dsm Ip Assets B.V. A crispr-cas system for a lipolytic yeast host cell
CN104593422A (zh) 2015-01-08 2015-05-06 中国农业大学 一种抗蓝耳病克隆猪的制备方法
WO2016112242A1 (en) 2015-01-08 2016-07-14 President And Fellows Of Harvard College Split cas9 proteins
CN107406842B (zh) 2015-01-09 2021-05-11 生物辐射实验室股份有限公司 检测基因组编辑
WO2016115179A1 (en) 2015-01-12 2016-07-21 Massachusetts Institute Of Technology Gene editing through microfluidic delivery
WO2016114972A1 (en) 2015-01-12 2016-07-21 The Regents Of The University Of California Heterodimeric cas9 and methods of use thereof
WO2016112963A1 (en) 2015-01-13 2016-07-21 Riboxx Gmbh Delivery of biomolecules into cells
MA41349A (fr) 2015-01-14 2017-11-21 Univ Temple Éradication de l'herpès simplex de type i et d'autres virus de l'herpès associés guidée par arn
WO2016115326A1 (en) 2015-01-15 2016-07-21 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Methods for modulating genome editing
CN104611370A (zh) 2015-01-16 2015-05-13 深圳市科晖瑞生物医药有限公司 一种剔除β2-微球蛋白基因片段的方法
KR102085189B1 (ko) 2015-01-19 2020-04-28 인스티튜트 오브 제네틱스 앤드 디벨롭멘털 바이오롤지, 차이니즈 아카데미 오브 사이언시스 일시적인 유전자 발현을 통한 정교한 식물 변형 방법
CN104725626B (zh) 2015-01-22 2016-06-29 漳州亚邦化学有限公司 一种适用于人造石英石的不饱和树脂的制备方法
CN105821072A (zh) 2015-01-23 2016-08-03 深圳华大基因研究院 用于DNA组装的CRISPR-Cas9系统及DNA组装方法
WO2016123071A1 (en) 2015-01-26 2016-08-04 Cold Spring Harbor Laboratory Methods of identifying essential protein domains
US10059940B2 (en) 2015-01-27 2018-08-28 Minghong Zhong Chemically ligated RNAs for CRISPR/Cas9-lgRNA complexes as antiviral therapeutic agents
CN104561095B (zh) 2015-01-27 2017-08-22 深圳市国创纳米抗体技术有限公司 一种能够生产人神经生长因子的转基因小鼠的制备方法
WO2016123243A1 (en) 2015-01-28 2016-08-04 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for labeling a single-stranded target nucleic acid
ES2955957T3 (es) 2015-01-28 2023-12-11 Caribou Biosciences Inc Polinucleótidos de ADN/ARN híbridos CRISPR y procedimientos de uso
EP3798302A1 (fr) 2015-01-29 2021-03-31 Meiogenix Procede pour induire des recombinaisons meiotiques ciblees
CN107429254B (zh) 2015-01-30 2021-10-15 加利福尼亚大学董事会 原代造血细胞中的蛋白递送
WO2016126747A1 (en) 2015-02-02 2016-08-11 Meiragtx Uk Limited Regulation of gene expression by aptamer-mediated modulation of alternative splicing
CN104593418A (zh) 2015-02-06 2015-05-06 中国医学科学院医学实验动物研究所 一种人源化大鼠药物评价动物模型建立的方法
US10676726B2 (en) 2015-02-09 2020-06-09 Duke University Compositions and methods for epigenome editing
KR101584933B1 (ko) 2015-02-10 2016-01-13 성균관대학교산학협력단 항생제 내성 억제용 재조합 벡터 및 이의 용도
WO2016130697A1 (en) 2015-02-11 2016-08-18 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Methods and kits for generating vectors that co-express multiple target molecules
CN104928321B (zh) 2015-02-12 2018-06-01 中国科学院西北高原生物研究所 一种由Crispr/Cas9诱导的鳞片缺失斑马鱼模式及建立方法
CN104726494B (zh) 2015-02-12 2018-10-23 中国人民解放军第二军医大学 CRISPR-Cas9技术构建染色体易位干细胞及动物模型的方法
US10584321B2 (en) 2015-02-13 2020-03-10 University Of Massachusetts Compositions and methods for transient delivery of nucleases
US20160244784A1 (en) 2015-02-15 2016-08-25 Massachusetts Institute Of Technology Population-Hastened Assembly Genetic Engineering
WO2016132122A1 (en) 2015-02-17 2016-08-25 University Of Edinburgh Assay construct
WO2016133165A1 (ja) 2015-02-19 2016-08-25 国立大学法人徳島大学 Cas9 mRNAを哺乳動物の受精卵にエレクトロポレーションにより導入する方法
WO2016137949A1 (en) 2015-02-23 2016-09-01 Voyager Therapeutics, Inc. Regulatable expression using adeno-associated virus (aav)
CN107532182A (zh) 2015-02-23 2018-01-02 克里斯珀医疗股份公司 治疗血红蛋白病的材料和方法
WO2016135559A2 (en) 2015-02-23 2016-09-01 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of human genetic diseases including hemoglobinopathies
US20160244829A1 (en) 2015-02-25 2016-08-25 University-Industry Foundation, Yonsei University Method for target dna enrichment using crispr system
MX2017010746A (es) 2015-02-25 2017-11-28 Pioneer Hi Bred Int Composicion y metodos para la expresion regulada de un complejo de arn guia/endonucleasa cas.
WO2016135507A1 (en) 2015-02-27 2016-09-01 University Of Edinburgh Nucleic acid editing systems
CN104805099B (zh) 2015-03-02 2018-04-13 中国人民解放军第二军医大学 一种安全编码Cas9蛋白的核酸分子及其表达载体
EP3265559B1 (en) 2015-03-03 2021-01-06 The General Hospital Corporation Engineered crispr-cas9 nucleases with altered pam specificity
CN104651401B (zh) 2015-03-05 2019-03-08 东华大学 一种mir-505双等位基因敲除的方法
CN104673816A (zh) 2015-03-05 2015-06-03 广东医学院 一种pCr-NHEJ载体及其构建方法及其用于细菌基因定点敲除的应用
WO2016145150A2 (en) 2015-03-11 2016-09-15 The Broad Institute Inc. Selective treatment of prmt5 dependent cancer
WO2016141893A1 (zh) 2015-03-12 2016-09-15 中国科学院遗传与发育生物学研究所 一种提高植物对入侵的dna病毒的抵御能力的方法
GB201504223D0 (en) 2015-03-12 2015-04-29 Genome Res Ltd Biallelic genetic modification
CA2979567C (en) 2015-03-13 2020-10-13 The Jackson Laboratory A three-component crispr/cas complex system and uses thereof
CN106032540B (zh) 2015-03-16 2019-10-25 中国科学院上海生命科学研究院 CRISPR/Cas9核酸内切酶体系的腺相关病毒载体构建及其用途
CA2979290A1 (en) 2015-03-16 2016-10-06 Institute Of Genetics And Developmental Biology, Chinese Academy Of Sciences A method for making site-directed modification to plant genomes by using non-inheritable materials
WO2016149484A2 (en) 2015-03-17 2016-09-22 Temple University Of The Commonwealth System Of Higher Education Compositions and methods for specific reactivation of hiv latent reservoir
WO2016149547A1 (en) 2015-03-17 2016-09-22 Bio-Rad Laboratories, Inc. Detection of genome editing
MA41382A (fr) 2015-03-20 2017-11-28 Univ Temple Édition génique basée sur le système crispr/endonucléase à induction par tat
EP3271461A1 (en) 2015-03-20 2018-01-24 Danmarks Tekniske Universitet Crispr/cas9 based engineering of actinomycetal genomes
CN104726449A (zh) 2015-03-23 2015-06-24 国家纳米科学中心 一种用于预防和/或治疗HIV的CRISPR-Cas9系统及其制备方法和用途
CN106148416B (zh) 2015-03-24 2019-12-17 华东师范大学 Cyp基因敲除大鼠的培育方法及其肝微粒体的制备方法
WO2016154596A1 (en) 2015-03-25 2016-09-29 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods, compositions and components
WO2016154579A2 (en) 2015-03-26 2016-09-29 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-mediated gene conversion
CA2981509A1 (en) 2015-03-30 2016-10-06 The Board Of Regents Of The Nevada System Of Higher Educ. On Behalf Of The University Of Nevada, La Compositions comprising talens and methods of treating hiv
EP3277805A1 (en) 2015-03-31 2018-02-07 Exeligen Scientific, Inc. Cas 9 retroviral integrase and cas 9 recombinase systems for targeted incorporation of a dna sequence into a genome of a cell or organism
CA2981508A1 (en) 2015-04-01 2016-10-06 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating duchenne muscular dystrophy and becker muscular dystrophy
WO2016161260A1 (en) 2015-04-02 2016-10-06 Agenovir Corporation Gene delivery methods and compositions
US20170166928A1 (en) 2015-04-03 2017-06-15 Whitehead Institute For Biomedical Research Compositions And Methods For Genetically Modifying Yeast
CN106434737A (zh) 2015-04-03 2017-02-22 内蒙古中科正标生物科技有限责任公司 基于CRISPR/Cas9技术的单子叶植物基因敲除载体及其应用
ES2959608T3 (es) 2015-04-03 2024-02-27 Dana Farber Cancer Inst Inc Composición y métodos de edición del genoma de células B
JP6873911B2 (ja) 2015-04-06 2021-05-19 ザ ボード オブ トラスティーズ オブ ザ レランド スタンフォード ジュニア ユニバーシティー 初代細胞において標的核酸の遺伝子調節を誘導するためにインビトロで行う方法
WO2016164797A1 (en) 2015-04-08 2016-10-13 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Activatable crispr/cas9 for spatial and temporal control of genome editing
WO2016167300A1 (ja) 2015-04-13 2016-10-20 国立大学法人東京大学 光依存的に又は薬物存在下でヌクレアーゼ活性若しくはニッカーゼ活性を示す、又は標的遺伝子の発現を抑制若しくは活性化するポリペプチドのセット
US10155938B2 (en) 2015-04-14 2018-12-18 City Of Hope Coexpression of CAS9 and TREX2 for targeted mutagenesis
GB201506509D0 (en) 2015-04-16 2015-06-03 Univ Wageningen Nuclease-mediated genome editing
EP3286322A1 (en) 2015-04-21 2018-02-28 Novartis AG Rna-guided gene editing system and uses thereof
CN104805118A (zh) 2015-04-22 2015-07-29 扬州大学 一种苏禽黄鸡胚胎干细胞特定基因进行靶向敲除方法
CN104762321A (zh) 2015-04-22 2015-07-08 东北林业大学 基于CRISPR/Cas9系统靶向敲除KHV基因的敲除载体构建方法及其crRNA原件
US20180298340A1 (en) 2015-04-24 2018-10-18 The Regents Of The University Of California Systems for detecting, monitoring or treating diseases or conditions using engineered cells and methods for making and using them
CN107690480B (zh) 2015-04-24 2022-03-22 爱迪塔斯医药公司 Cas9分子/指导rna分子复合物的评价
US11268158B2 (en) 2015-04-24 2022-03-08 St. Jude Children's Research Hospital, Inc. Assay for safety assessment of therapeutic genetic manipulations, gene therapy vectors and compounds
JP6851319B2 (ja) 2015-04-27 2021-03-31 ザ・トラステイーズ・オブ・ザ・ユニバーシテイ・オブ・ペンシルベニア ヒト疾患のCRISPR/Cas9媒介性の修正のためのデュアルAAVベクター系
WO2016174056A1 (en) 2015-04-27 2016-11-03 Genethon Compositions and methods for the treatment of nucleotide repeat expansion disorders
EP3087974A1 (en) 2015-04-29 2016-11-02 Rodos BioTarget GmbH Targeted nanocarriers for targeted drug delivery of gene therapeutics
ES2898917T3 (es) 2015-04-30 2022-03-09 Univ Columbia Tratamiento génico para enfermedades autosómicas dominantes
US20190002920A1 (en) 2015-04-30 2019-01-03 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Methods and kits for cloning-free genome editing
WO2016179112A1 (en) 2015-05-01 2016-11-10 Precision Biosciences, Inc. Precise deletion of chromoscomal sequences in vivo and treatment of nucleotide repeat expansion disorders using engineered nucleases
US20160346359A1 (en) 2015-05-01 2016-12-01 Spark Therapeutics, Inc. Adeno-associated Virus-Mediated CRISPR-Cas9 Treatment of Ocular Disease
US11845928B2 (en) 2015-05-04 2023-12-19 Tsinghua University Methods and kits for fragmenting DNA
CN104894068A (zh) 2015-05-04 2015-09-09 南京凯地生物科技有限公司 一种利用CRISPR/Cas9制备CAR-T细胞的方法
GB2531454A (en) 2016-01-10 2016-04-20 Snipr Technologies Ltd Recombinogenic nucleic acid strands in situ
ES2905525T3 (es) 2015-05-06 2022-04-11 Snipr Tech Ltd Alteración de poblaciones microbianas y modificación de la microbiota
WO2016182917A1 (en) 2015-05-08 2016-11-17 Children's Medical Center Corporation Targeting bcl11a enhancer functional regions for fetal hemoglobin reinduction
WO2016182893A1 (en) 2015-05-08 2016-11-17 Teh Broad Institute Inc. Functional genomics using crispr-cas systems for saturating mutagenesis of non-coding elements, compositions, methods, libraries and applications thereof
WO2016182959A1 (en) 2015-05-11 2016-11-17 Editas Medicine, Inc. Optimized crispr/cas9 systems and methods for gene editing in stem cells
EP3294888A1 (en) 2015-05-11 2018-03-21 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating hiv infection and aids
IL284707B2 (en) 2015-05-12 2024-01-01 Sangamo Therapeutics Inc Regulation of nuclease-mediated gene expression
KR101785847B1 (ko) 2015-05-12 2017-10-17 연세대학교 산학협력단 선형 이중가닥 DNA를 활용한 CRISPR/Cas9 시스템을 이용한 표적 유전체 교정
CN105886498A (zh) 2015-05-13 2016-08-24 沈志荣 CRISPR-Cas9特异性敲除人PCSK9基因的方法以及用于特异性靶向PCSK9基因的sgRNA
WO2016183402A2 (en) 2015-05-13 2016-11-17 President And Fellows Of Harvard College Methods of making and using guide rna for use with cas9 systems
WO2016181357A1 (en) 2015-05-13 2016-11-17 Zumutor Biologics, Inc. Afucosylated protein, cell expressing said protein and associated methods
AU2016262093B2 (en) 2015-05-13 2022-08-18 Seattle Children' S Hospital (Dba Seattle Children 's Research Institute) Enhancing endonuclease based gene editing in primary cells
US11535871B2 (en) 2015-05-14 2022-12-27 University Of Southern California Optimized gene editing utilizing a recombinant endonuclease system
WO2016183438A1 (en) 2015-05-14 2016-11-17 Massachusetts Institute Of Technology Self-targeting genome editing system
AU2016263026A1 (en) 2015-05-15 2017-11-09 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Guide RNA/Cas endonuclease systems
US20180142236A1 (en) 2015-05-15 2018-05-24 Ge Healthcare Dharmacon, Inc. Synthetic single guide rna for cas9-mediated gene editing
WO2016186772A2 (en) 2015-05-16 2016-11-24 Genzyme Corporation Gene editing of deep intronic mutations
CN104846010B (zh) 2015-05-18 2018-07-06 安徽省农业科学院水稻研究所 一种删除转基因水稻筛选标记基因的方法
EP3298149A1 (en) 2015-05-18 2018-03-28 King Abdullah University Of Science And Technology Method of inhibiting plant virus pathogen infections by crispr/cas9-mediated interference
EP3095870A1 (en) 2015-05-19 2016-11-23 Kws Saat Se Methods for the in planta transformation of plants and manufacturing processes and products based and obtainable therefrom
CN106011104B (zh) 2015-05-21 2019-09-27 清华大学 利用拆分Cas系统进行基因编辑和表达调控方法
WO2016187904A1 (zh) 2015-05-22 2016-12-01 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪CMAH基因的方法及用于特异性靶向CMAH基因的sgRNA
CN105518135B (zh) 2015-05-22 2020-11-24 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪CMAH基因的方法及用于特异性靶向CMAH基因的sgRNA
WO2016187717A1 (en) 2015-05-26 2016-12-01 Exerkine Corporation Exosomes useful for genome editing
CN105624146B (zh) 2015-05-28 2019-02-15 中国科学院微生物研究所 基于CRISPR/Cas9和酿酒酵母细胞内源的同源重组的分子克隆方法
CN104894075B (zh) 2015-05-28 2019-08-06 华中农业大学 CRISPR/Cas9和Cre/lox系统编辑伪狂犬病毒基因组制备疫苗方法和应用
US20180148711A1 (en) 2015-05-28 2018-05-31 Coda Biotherapeutics, Inc. Genome editing vectors
CA3000155A1 (en) 2015-05-29 2016-12-08 Agenovir Corporation Compositions and methods for cell targeted hpv treatment
US20180148486A1 (en) 2015-05-29 2018-05-31 Clark Atlanta University Human cell lines mutant for zic2
EP3331571A4 (en) 2015-05-29 2019-04-10 Agenovir Corporation COMPOSITIONS AND METHODS FOR TREATING VIRAL INFECTIONS
US20160346362A1 (en) 2015-05-29 2016-12-01 Agenovir Corporation Methods and compositions for treating cytomegalovirus infections
US10117911B2 (en) 2015-05-29 2018-11-06 Agenovir Corporation Compositions and methods to treat herpes simplex virus infections
US20160350476A1 (en) 2015-05-29 2016-12-01 Agenovir Corporation Antiviral methods and compositions
CA3000182A1 (en) 2015-05-29 2016-12-08 Agenovir Corporation Methods and compositions for treating cells for transplant
CN108026536A (zh) 2015-05-29 2018-05-11 北卡罗来纳州立大学 使用crispr核酸筛选细菌、古细菌、藻类和酵母的方法
CA2987684A1 (en) 2015-06-01 2016-12-08 The Hospital For Sick Children Delivery of structurally diverse polypeptide cargo into mammalian cells by a bacterial toxin
JP6968416B2 (ja) 2015-06-01 2021-11-17 テンプル ユニバーシティー オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケーション Rna誘導性の、hiv感染の処置のための、方法および組成物
CN105112445B (zh) 2015-06-02 2018-08-10 广州辉园苑医药科技有限公司 一种基于CRISPR-Cas9基因敲除技术的miR-205基因敲除试剂盒
US10392607B2 (en) 2015-06-03 2019-08-27 The Regents Of The University Of California Cas9 variants and methods of use thereof
CN108368502B (zh) 2015-06-03 2022-03-18 内布拉斯加大学董事委员会 使用单链dna的dna编辑
WO2016197133A1 (en) 2015-06-04 2016-12-08 Protiva Biotherapeutics, Inc. Delivering crispr therapeutics with lipid nanoparticles
US20180245074A1 (en) 2015-06-04 2018-08-30 Protiva Biotherapeutics, Inc. Treating hepatitis b virus infection using crispr
CN105039339B (zh) 2015-06-05 2017-12-19 新疆畜牧科学院生物技术研究所 一种以RNA介导的特异性敲除绵羊FecB基因的方法及其专用sgRNA
US11279926B2 (en) 2015-06-05 2022-03-22 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for generating CRISPR/Cas guide RNAs
WO2016201047A1 (en) 2015-06-09 2016-12-15 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for improving transplantation
US20160362667A1 (en) 2015-06-10 2016-12-15 Caribou Biosciences, Inc. CRISPR-Cas Compositions and Methods
WO2016198500A1 (en) 2015-06-10 2016-12-15 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Methods and compositions for rna-guided treatment of human cytomegalovirus (hcmv) infection
EP3307770B1 (en) 2015-06-10 2020-05-27 Firmenich SA Method of identifying musk compounds
CA2987078A1 (en) 2015-06-10 2016-12-15 Firmenich Sa Cell lines for screening odorant and aroma receptors
WO2016197357A1 (zh) 2015-06-11 2016-12-15 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪SLA-3基因的方法及用于特异性靶向SLA-3基因的sgRNA
WO2016197358A1 (zh) 2015-06-11 2016-12-15 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪FGL2基因的方法及用于特异性靶向FGL2基因的sgRNA
WO2016197354A1 (zh) 2015-06-11 2016-12-15 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪PDX1基因的方法及用于特异性靶向PDX1基因的sgRNA
CN105518134A (zh) 2015-06-11 2016-04-20 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪SLA-2基因的方法及用于特异性靶向SLA-2基因的sgRNA
WO2016197359A1 (zh) 2015-06-11 2016-12-15 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪SLA-1基因的方法及用于特异性靶向SLA-1基因的sgRNA
CN105492609A (zh) 2015-06-11 2016-04-13 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪GGTA1基因的方法及用于特异性靶向GGTA1基因的sgRNA
WO2016197360A1 (zh) 2015-06-11 2016-12-15 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪GFRA1基因的方法及用于特异性靶向GFRA1基因的sgRNA
CN105518137B (zh) 2015-06-11 2021-04-30 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪SALL1基因的方法及用于特异性靶向SALL1基因的sgRNA
CN105518140A (zh) 2015-06-11 2016-04-20 深圳市第二人民医院 CRISPR-Cas9特异性敲除猪vWF基因的方法及用于特异性靶向vWF基因的sgRNA
WO2016201138A1 (en) 2015-06-12 2016-12-15 The Regents Of The University Of California Reporter cas9 variants and methods of use thereof
WO2016200263A1 (en) 2015-06-12 2016-12-15 Erasmus University Medical Center Rotterdam New crispr assays
GB201510296D0 (en) 2015-06-12 2015-07-29 Univ Wageningen Thermostable CAS9 nucleases
EP4299754A3 (en) 2015-06-15 2024-03-20 North Carolina State University Methods and compositions for efficient delivery of nucleic acids and rna-based antimicrobials
AU2016278959A1 (en) 2015-06-17 2018-01-18 The Uab Research Foundation CRISPR/Cas9 complex for introducing a functional polypeptide into cells of blood cell lineage
WO2016205728A1 (en) 2015-06-17 2016-12-22 Massachusetts Institute Of Technology Crispr mediated recording of cellular events
US11643668B2 (en) 2015-06-17 2023-05-09 The Uab Research Foundation CRISPR/Cas9 complex for genomic editing
WO2016205623A1 (en) 2015-06-17 2016-12-22 North Carolina State University Methods and compositions for genome editing in bacteria using crispr-cas9 systems
AU2016279062A1 (en) 2015-06-18 2019-03-28 Omar O. Abudayyeh Novel CRISPR enzymes and systems
EP3800255A3 (en) 2015-06-18 2021-06-23 Robert D. Bowles Rna-guided transcriptional regulation and methods of using the same for the treatment of back pain
RU2752834C2 (ru) 2015-06-18 2021-08-09 Те Брод Инститьют, Инк. Мутации фермента crispr, уменьшающие нецелевые эффекты
US9790490B2 (en) 2015-06-18 2017-10-17 The Broad Institute Inc. CRISPR enzymes and systems
EP3666895A1 (en) 2015-06-18 2020-06-17 The Broad Institute, Inc. Novel crispr enzymes and systems
WO2016205759A1 (en) 2015-06-18 2016-12-22 The Broad Institute Inc. Engineering and optimization of systems, methods, enzymes and guide scaffolds of cas9 orthologs and variants for sequence manipulation
WO2016205745A2 (en) 2015-06-18 2016-12-22 The Broad Institute Inc. Cell sorting
US9957501B2 (en) 2015-06-18 2018-05-01 Sangamo Therapeutics, Inc. Nuclease-mediated regulation of gene expression
GB201511376D0 (en) 2015-06-29 2015-08-12 Ecolab Usa Inc Process for the treatment of produced water from chemical enhanced oil recovery
WO2017004261A1 (en) 2015-06-29 2017-01-05 Ionis Pharmaceuticals, Inc. Modified crispr rna and modified single crispr rna and uses thereof
WO2017004279A2 (en) 2015-06-29 2017-01-05 Massachusetts Institute Of Technology Compositions comprising nucleic acids and methods of using the same
EP3317399B1 (en) 2015-06-30 2024-06-26 Cellectis Methods for improving functionality in nk cell by gene inactivation using specific endonuclease
EP3317409A4 (en) 2015-07-02 2019-02-20 The Johns Hopkins University CRISPIR / CAS9-BASED TREATMENTS
EP3320091B1 (en) 2015-07-06 2020-11-11 DSM IP Assets B.V. Guide rna assembly vector
US20170009242A1 (en) 2015-07-06 2017-01-12 Whitehead Institute For Biomedical Research CRISPR-Mediated Genome Engineering for Protein Depletion
CN105132451B (zh) 2015-07-08 2019-07-23 电子科技大学 一种CRISPR/Cas9单一转录单元定向修饰骨架载体及其应用
EP3322297A4 (en) 2015-07-13 2019-04-17 Sangamo Therapeutics, Inc. RELEASE METHOD AND COMPOSITIONS FOR NUCLEASE-DERIVED GENOMINE ENGINEERING
US20170014449A1 (en) 2015-07-13 2017-01-19 Elwha LLC, a limited liability company of the State of Delaware Site-specific epigenetic editing
EP3322797B1 (en) 2015-07-13 2023-11-29 Institut Pasteur Improving sequence-specific antimicrobials by blocking dna repair
US11390865B2 (en) 2015-07-14 2022-07-19 Fukuoka University Method for introducing site-directed RNA mutation, target editing guide RNA used in the method and target RNA-target editing guide RNA complex
JP7044373B2 (ja) 2015-07-15 2022-03-30 ラトガース,ザ ステート ユニバーシティ オブ ニュージャージー ヌクレアーゼ非依存的な標的化遺伝子編集プラットフォームおよびその用途
MA42895A (fr) 2015-07-15 2018-05-23 Juno Therapeutics Inc Cellules modifiées pour thérapie cellulaire adoptive
US20170020922A1 (en) 2015-07-16 2017-01-26 Batu Biologics Inc. Gene editing for immunological destruction of neoplasia
WO2017015101A1 (en) 2015-07-17 2017-01-26 University Of Washington Methods for maximizing the efficiency of targeted gene correction
WO2017015015A1 (en) 2015-07-17 2017-01-26 Emory University Crispr-associated protein from francisella and uses related thereto
EP3325018A4 (en) 2015-07-22 2019-04-24 Duke University HIGH EFFICIENCY SCREENING OF REGULATORY ELEMENT FUNCTION USING EPIGENOUS EDITING TECHNOLOGIES
US10392674B2 (en) 2015-07-22 2019-08-27 President And Fellows Of Harvard College Evolution of site-specific recombinases
EP3325668B1 (en) 2015-07-23 2021-01-06 Mayo Foundation for Medical Education and Research Editing mitochondrial dna
US20180360994A1 (en) 2015-07-25 2018-12-20 Habib Frost System, device and a method for providing a therapy or a cure for cancer and other pathological states
CN106399360A (zh) 2015-07-27 2017-02-15 上海药明生物技术有限公司 基于crispr技术敲除fut8基因的方法
CN105063061B (zh) 2015-07-28 2018-10-30 华南农业大学 一种水稻千粒重基因tgw6突变体及其制备方法与应用
WO2017019867A1 (en) 2015-07-28 2017-02-02 Danisco Us Inc Genome editing systems and methods of use
CN106701808A (zh) 2015-07-29 2017-05-24 深圳华大基因研究院 Dna聚合酶i缺陷型菌株及其构建方法
WO2017019895A1 (en) 2015-07-30 2017-02-02 President And Fellows Of Harvard College Evolution of talens
CN108472314A (zh) 2015-07-31 2018-08-31 明尼苏达大学董事会 修饰的细胞和治疗方法
WO2017069829A2 (en) 2015-07-31 2017-04-27 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York High-throughput strategy for dissecting mammalian genetic interactions
WO2017023974A1 (en) 2015-08-03 2017-02-09 President And Fellows Of Harvard College Cas9 genome editing and transcriptional regulation
WO2017024047A1 (en) 2015-08-03 2017-02-09 Emendobio Inc. Compositions and methods for increasing nuclease induced recombination rate in cells
AU2016301195B2 (en) 2015-08-06 2022-09-01 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Targeted protein degradation to attenuate adoptive T-cell therapy associated adverse inflammatory responses
AU2016305490B2 (en) 2015-08-07 2022-07-14 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Method for producing an animal comprising a germline genetic modification
US9580727B1 (en) 2015-08-07 2017-02-28 Caribou Biosciences, Inc. Compositions and methods of engineered CRISPR-Cas9 systems using split-nexus Cas9-associated polynucleotides
CN104962523B (zh) 2015-08-07 2018-05-25 苏州大学 一种测定非同源末端连接修复活性的方法
CA2994746A1 (en) 2015-08-11 2017-02-16 Cellectis Cells for immunotherapy engineered for targeting cd38 antigen and for cd38 gene inactivation
CN105255937A (zh) 2015-08-14 2016-01-20 西北农林科技大学 一种真核细胞III型启动子表达CRISPR sgRNA的方法及其应用
EP3334832A4 (en) 2015-08-14 2019-06-26 Institute Of Genetics And Developmental Biology, Chinese Academy Of Sciences METHOD FOR OBTAINING GLYPHOSATE-RESISTANT RICE BY DIRECTED NUCLEOTIDE SUBSTITUTION
CA2995983A1 (en) 2015-08-19 2017-02-23 Arc Bio, Llc Capture of nucleic acids using a nucleic acid-guided nuclease-based system
US11339408B2 (en) 2015-08-20 2022-05-24 Applied Stemcell, Inc. Nuclease with enhanced efficiency of genome editing
CN105112519A (zh) 2015-08-20 2015-12-02 郑州大学 一种基于crispr的大肠杆菌o157:h7菌株检测试剂盒及检测方法
CN105177126B (zh) 2015-08-21 2018-12-04 东华大学 一种利用荧光pcr技术对小鼠的分型鉴定方法
CA2996001A1 (en) 2015-08-25 2017-03-02 Duke University Compositions and methods of improving specificity in genomic engineering using rna-guided endonucleases
CN106480083B (zh) 2015-08-26 2021-12-14 中国科学院分子植物科学卓越创新中心 CRISPR/Cas9介导的大片段DNA拼接方法
US9512446B1 (en) 2015-08-28 2016-12-06 The General Hospital Corporation Engineered CRISPR-Cas9 nucleases
WO2017040348A1 (en) 2015-08-28 2017-03-09 The General Hospital Corporation Engineered crispr-cas9 nucleases
US9926546B2 (en) 2015-08-28 2018-03-27 The General Hospital Corporation Engineered CRISPR-Cas9 nucleases
CN105087620B (zh) 2015-08-31 2017-12-29 中国农业大学 一种过表达猪共刺激受体4‑1bb载体及其应用
US20170058272A1 (en) 2015-08-31 2017-03-02 Caribou Biosciences, Inc. Directed nucleic acid repair
EP3344771A4 (en) 2015-08-31 2019-03-20 Agilent Technologies, Inc. COMPOUNDS AND METHODS FOR GENOME EDITING BASED ON CRISPR / CAS BY HOMOLOGOUS RECOMBINATION
EP3344766B8 (en) 2015-09-01 2021-03-17 Dana-Farber Cancer Institute, Inc. Systems and methods for selection of grna targeting strands for cas9 localization
US11390908B2 (en) 2015-09-02 2022-07-19 University Of Massachusetts Detection of gene loci with CRISPR arrayed repeats and/or polychromatic single guide ribonucleic acids
WO2017040786A1 (en) 2015-09-04 2017-03-09 Massachusetts Institute Of Technology Multilayer genetic safety kill circuits based on single cas9 protein and multiple engineered grna in mammalian cells
CN105400810B (zh) 2015-09-06 2019-05-07 吉林大学 采用敲除技术建立低磷性佝偻病模型的方法
CA3036409C (en) 2015-09-08 2023-07-11 Erik J. Sontheimer Dnase h activity of neisseria meningitidis cas9
ES2938623T3 (es) 2015-09-09 2023-04-13 Univ Kobe Nat Univ Corp Método para convertir una secuencia del genoma de una bacteria gram-positiva mediante una conversión específica de una base de ácido nucleico de una secuencia de ADN seleccionada como diana y el complejo molecular utilizado en el mismo
EP3348636B1 (en) 2015-09-09 2021-12-01 National University Corporation Kobe University Method for modifying genome sequence that specifically converts nucleobase of targeted dna sequence, and molecular complex used in said method
EP3347469A4 (en) 2015-09-10 2019-02-27 Youhealth Biotech, Limited METHOD AND COMPOSITIONS FOR TREATING GLAUCOMA
WO2017044776A1 (en) 2015-09-10 2017-03-16 Texas Tech University System Single-guide rna (sgrna) with improved knockout efficiency
CN105274144A (zh) 2015-09-14 2016-01-27 徐又佳 通过CRISPR/Cas9技术得到敲除铁调素基因斑马鱼的制备方法
US10301613B2 (en) 2015-09-15 2019-05-28 Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University Targeted remodeling of prokaryotic genomes using CRISPR-nickases
CN105210981B (zh) 2015-09-15 2018-09-28 中国科学院生物物理研究所 建立可应用于人类疾病研究的雪貂模型的方法及其应用
CN105112422B (zh) 2015-09-16 2019-11-08 中山大学 基因miR408和UCL在培育高产水稻中的应用
WO2017049129A2 (en) 2015-09-18 2017-03-23 President And Fellows Of Harvard College Methods of making guide rna
WO2017053312A1 (en) 2015-09-21 2017-03-30 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for target nucleic acid modification
CA3002647A1 (en) 2015-09-21 2017-03-30 Arcturus Therapeutics, Inc. Allele selective gene editing and uses thereof
CN105132427B (zh) 2015-09-21 2019-01-08 新疆畜牧科学院生物技术研究所 一种以RNA介导的特异性敲除双基因获得基因编辑绵羊的方法及其专用sgRNA
CN108348576B (zh) 2015-09-23 2022-01-11 桑格摩生物治疗股份有限公司 Htt阻抑物及其用途
WO2017053762A1 (en) 2015-09-24 2017-03-30 Sigma-Aldrich Co. Llc Methods and reagents for molecular proximity detection using rna-guided nucleic acid binding proteins
AU2016326711B2 (en) 2015-09-24 2022-11-03 Editas Medicine, Inc. Use of exonucleases to improve CRISPR/Cas-mediated genome editing
CA2998287A1 (en) 2015-09-24 2017-04-20 Crispr Therapeutics Ag Novel family of rna-programmable endonucleases and their uses in genome editing and other applications
KR101745863B1 (ko) 2015-09-25 2017-06-12 전남대학교산학협력단 Crispr/cas9 시스템을 이용한 프로히비틴2 유전자 제거용 시발체
EP3353309A4 (en) 2015-09-25 2019-04-10 Tarveda Therapeutics, Inc. COMPOSITIONS AND METHOD FOR GENERIC EDITING
KR101795999B1 (ko) 2015-09-25 2017-11-09 전남대학교산학협력단 Crispr/cas9 시스템을 이용한 베타2-마이크로글로불린 유전자 제거용 시발체
WO2017053729A1 (en) 2015-09-25 2017-03-30 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Nuclease-mediated genome editing of primary cells and enrichment thereof
EP3147363B1 (en) 2015-09-26 2019-10-16 B.R.A.I.N. Ag Activation of taste receptor genes in mammalian cells using crispr-cas-9
AU2016332345A1 (en) 2015-09-28 2018-04-12 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Methods and compositions for RNA-guided treatment of HIV infection
WO2017058791A1 (en) 2015-09-29 2017-04-06 Agenovir Corporation Compositions and methods for treatment of latent viral infections
WO2017058795A1 (en) 2015-09-29 2017-04-06 Agenovir Corporation Compositions and methods for latent viral transcription regulation
CN105177038B (zh) 2015-09-29 2018-08-24 中国科学院遗传与发育生物学研究所 一种高效定点编辑植物基因组的CRISPR/Cas9系统
US20170088587A1 (en) 2015-09-29 2017-03-30 Agenovir Corporation Antiviral fusion proteins and genes
WO2017058793A1 (en) 2015-09-29 2017-04-06 Agenovir Corporation Delivery methods and compositions
CN105331627B (zh) 2015-09-30 2019-04-02 华中农业大学 一种利用内源CRISPR-Cas系统进行原核生物基因组编辑的方法
WO2017059241A1 (en) 2015-10-02 2017-04-06 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Lentiviral protein delivery system for rna-guided genome editing
AU2016336452B2 (en) 2015-10-06 2022-10-06 The Children's Hospital Of Philadelphia Compositions and methods for treating fragile X syndrome and related syndromes
WO2017062754A1 (en) 2015-10-07 2017-04-13 New York University Compositions and methods for enhancing crispr activity by polq inhibition
CA3001314A1 (en) 2015-10-08 2017-04-13 President And Fellows Of Harvard College Multiplexed genome editing of retroviral elements
WO2017062886A1 (en) 2015-10-08 2017-04-13 Cellink Corporation Battery interconnects
CN116555254A (zh) 2015-10-09 2023-08-08 孟山都技术公司 新颖的rna导向性核酸酶及其用途
CA3004713A1 (en) 2015-10-09 2017-04-13 The Children's Hospital Of Philadelphia Compositions and methods for treating huntington's disease and related disorders
EP4144844A1 (en) 2015-10-12 2023-03-08 DuPont US Holding, LLC Protected dna templates for gene modification and increased homologous recombination in cells and methods of use
US11970710B2 (en) 2015-10-13 2024-04-30 Duke University Genome engineering with Type I CRISPR systems in eukaryotic cells
EP3362102A1 (en) 2015-10-14 2018-08-22 Life Technologies Corporation Ribonucleoprotein transfection agents
CN105400779A (zh) 2015-10-15 2016-03-16 芜湖医诺生物技术有限公司 嗜热链球菌CRISPR-Cas9系统识别的人CCR5基因的靶序列和sgRNA及其应用
JP2018531261A (ja) 2015-10-16 2018-10-25 テンプル ユニバーシティー オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケーション Cpf1を用いた、rnaガイド遺伝子編集方法および組成物
CA3001518A1 (en) 2015-10-16 2017-04-20 Astrazeneca Ab Inducible modification of a cell genome
FR3042506B1 (fr) 2015-10-16 2018-11-30 IFP Energies Nouvelles Outil genetique de transformation de bacteries clostridium
US20180327706A1 (en) 2015-10-19 2018-11-15 The Methodist Hospital Crispr-cas9 delivery to hard-to-transfect cells via membrane deformation
CN105331607A (zh) 2015-10-19 2016-02-17 芜湖医诺生物技术有限公司 嗜热链球菌CRISPR-Cas9系统识别的人CCR5基因的靶序列和sgRNA及其应用
CN105316324A (zh) 2015-10-20 2016-02-10 芜湖医诺生物技术有限公司 嗜热链球菌CRISPR-Cas9系统识别的人CXCR4基因的靶序列和sgRNA及其应用
CN105316337A (zh) 2015-10-20 2016-02-10 芜湖医诺生物技术有限公司 嗜热链球菌CRISPR-Cas9系统识别的人CXCR4基因的靶序列和sgRNA及其应用
WO2017068077A1 (en) 2015-10-20 2017-04-27 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Inserm) Methods and products for genetic engineering
US20180282763A1 (en) 2015-10-20 2018-10-04 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Restoring function to a non-functional gene product via guided cas systems and methods of use
CN105331608A (zh) 2015-10-20 2016-02-17 芜湖医诺生物技术有限公司 脑膜炎双球菌CRISPR-Cas9系统识别的人CXCR4基因的靶序列和sgRNA及其应用
CN105331609A (zh) 2015-10-20 2016-02-17 芜湖医诺生物技术有限公司 脑膜炎双球菌CRISPR-Cas9系统识别的人CCR5基因的靶序列和sgRNA及其应用
CA3001351A1 (en) 2015-10-21 2017-04-27 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating hepatitis b virus
CN105219799A (zh) 2015-10-22 2016-01-06 天津吉诺沃生物科技有限公司 一种基于CRISPR/Cas系统的多年生黑麦草的育种方法
EP3365441A1 (en) 2015-10-22 2018-08-29 The Broad Institute Inc. Type vi-b crispr enzymes and systems
IL294014B1 (en) 2015-10-23 2024-03-01 Harvard College Nucleobase editors and their uses
EP3159407A1 (en) 2015-10-23 2017-04-26 Silence Therapeutics (London) Ltd Guide rnas, methods and uses
DK3350327T3 (en) 2015-10-23 2019-01-21 Caribou Biosciences Inc CONSTRUCTED CRISPR CLASS-2-NUCLEIC ACID TARGETING-NUCLEIC ACID
US9988637B2 (en) 2015-10-26 2018-06-05 National Tsing Hua Univeristy Cas9 plasmid, genome editing system and method of Escherichia coli
TW201715041A (zh) 2015-10-26 2017-05-01 國立清華大學 細菌基因編輯方法
US10280411B2 (en) 2015-10-27 2019-05-07 Pacific Biosciences of California, In.c Methods, systems, and reagents for direct RNA sequencing
WO2017075261A1 (en) 2015-10-27 2017-05-04 Recombinetics, Inc. Engineering of humanized car t-cells and platelets by genetic complementation
EP3368054A4 (en) 2015-10-28 2019-07-03 Voyager Therapeutics, Inc. REGULATORY EXPRESSION USING THE ADENO-ASSOCIATED VIRUS (AAV)
PE20181206A1 (es) 2015-10-28 2018-07-23 Sangamo Therapeutics Inc Construcciones especificas del higado, casetes de expresion del factor viii y metodos de uso de estos
AU2016344609B2 (en) 2015-10-28 2022-05-12 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Materials and methods for treatment of duchenne muscular dystrophy
JP7408284B2 (ja) 2015-10-30 2024-01-05 エディタス・メディシン、インコーポレイテッド 単純ヘルペスウイルスを治療するためのcrispr/cas関連方法及び組成物
US11111508B2 (en) 2015-10-30 2021-09-07 Brandeis University Modified CAS9 compositions and methods of use
CN105238806B (zh) 2015-11-02 2018-11-27 中国科学院天津工业生物技术研究所 一种用于微生物的CRISPR/Cas9基因编辑载体的构建及其应用
CN105316327B (zh) 2015-11-03 2019-01-29 中国农业科学院作物科学研究所 小麦TaAGO4a基因CRISPR/Cas9载体及其应用
WO2017079428A1 (en) 2015-11-04 2017-05-11 President And Fellows Of Harvard College Site specific germline modification
CA3004053A1 (en) 2015-11-04 2017-05-11 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Methods and compositions for gene editing in hematopoietic stem cells
SG11201803144WA (en) 2015-11-04 2018-05-30 Fate Therapeutics Inc Genomic engineering of pluripotent cells
JP2018533376A (ja) 2015-11-05 2018-11-15 セントロ デ インベスティガシオン ビオメディカ エン レッド 赤血球系譜を冒す代謝疾患に罹患している被験体から単離された細胞の遺伝子編集の方法、上記方法により得られた細胞、及びそれらの使用
GB2544270A (en) 2015-11-05 2017-05-17 Fundació Centre De Regulació Genòmica Nucleic acids, peptides and methods
WO2017078751A1 (en) 2015-11-06 2017-05-11 The Methodist Hospital Micoluidic cell deomailiy assay for enabling rapid and efficient kinase screening via the crispr-cas9 system
EP3165314A1 (de) 2015-11-06 2017-05-10 Siegfried Plasch Auftragsschweissverfahren
JP2018532415A (ja) 2015-11-06 2018-11-08 ザ ジャクソン ラボラトリー 大きなゲノムdnaノックインおよびその使用
JP2018532419A (ja) 2015-11-09 2018-11-08 イフォム・フォンダツィオーネ・イスティトゥート・フィルチ・ディ・オンコロジア・モレコラーレ CRISPR−Cas sgRNAライブラリー
WO2017081288A1 (en) 2015-11-11 2017-05-18 Lonza Ltd Crispr-associated (cas) proteins with reduced immunogenicity
WO2017083722A1 (en) 2015-11-11 2017-05-18 Greenberg Kenneth P Crispr compositions and methods of using the same for gene therapy
TW201737944A (zh) 2015-11-12 2017-11-01 輝瑞大藥廠 使用crispr-cas9之組織特異性基因組工程
KR101885901B1 (ko) 2015-11-13 2018-08-07 기초과학연구원 5' 말단의 인산기가 제거된 rna를 포함하는 리보핵산단백질 전달용 조성물
US20170191047A1 (en) 2015-11-13 2017-07-06 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Adenosine-specific rnase and methods of use
US11306308B2 (en) 2015-11-13 2022-04-19 Massachusetts Institute Of Technology High-throughput CRISPR-based library screening
EP3377042A4 (en) 2015-11-16 2019-05-29 The Research Institute at Nationwide Children's Hospital SUBSTANCES AND METHODS FOR THE TREATMENT OF MYOPATHIES BASED ON TITINE AND OTHER TITINOPATHIES
US11905521B2 (en) 2015-11-17 2024-02-20 The Chinese University Of Hong Kong Methods and systems for targeted gene manipulation
JP2019500899A (ja) 2015-11-23 2019-01-17 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア CRISPR/Cas9の核送達を通じた細胞RNAの追跡と操作
CN105602987A (zh) 2015-11-23 2016-05-25 深圳市默赛尔生物医学科技发展有限公司 一种高效的dc细胞xbp1基因敲除方法
US20170145438A1 (en) 2015-11-24 2017-05-25 University Of South Carolina Viral Vectors for Gene Editing
US10240145B2 (en) 2015-11-25 2019-03-26 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University CRISPR/Cas-mediated genome editing to treat EGFR-mutant lung cancer
JP6500293B2 (ja) 2015-11-25 2019-04-17 国立大学法人群馬大学 Dnaメチル化編集用キットおよびdnaメチル化編集方法
US20180346940A1 (en) 2015-11-27 2018-12-06 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for the production of hydrocarbons, hydrogen and carbon monoxide using engineered azotobacter strains
CN105505979A (zh) 2015-11-28 2016-04-20 湖北大学 一种以CRISPR/Cas9基因编辑技术打靶Badh2基因获得香稻品系的方法
CN106811479B (zh) 2015-11-30 2019-10-25 中国农业科学院作物科学研究所 利用CRISPR/Cas9系统定点修饰ALS基因获得抗除草剂水稻的系统及其应用
KR101906491B1 (ko) 2015-11-30 2018-12-05 기초과학연구원 F. novicida 유래 Cas9을 포함하는 유전체 교정용 조성물
CN105296518A (zh) 2015-12-01 2016-02-03 中国农业大学 一种用于CRISPR/Cas9技术的同源臂载体构建方法
RU2634395C1 (ru) 2015-12-01 2017-10-26 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Балтийский Федеральный Университет имени Иммануила Канта" (БФУ им. И. Канта) Генетическая конструкция на основе системы редактирования генома crispr/cas9, кодирующая нуклеазу cas9, специфически импортируемую в митохондрии клеток человека
WO2017096041A1 (en) 2015-12-02 2017-06-08 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for modifying a target nucleic acid
US11118189B2 (en) 2015-12-02 2021-09-14 Ceres, Inc. Methods for genetic modification of plants
WO2017093370A1 (en) 2015-12-03 2017-06-08 Technische Universität München T-cell specific genome editing
CN105779449B (zh) 2015-12-04 2018-11-27 新疆农业大学 一种棉花启动子GbU6-5PS及应用
CN105779448B (zh) 2015-12-04 2018-11-27 新疆农业大学 一种棉花启动子GbU6-7PS及应用
CN106845151B (zh) 2015-12-07 2019-03-26 中国农业大学 CRISPR-Cas9系统sgRNA作用靶点的筛选方法及装置
CN105462968B (zh) 2015-12-07 2018-10-16 北京信生元生物医学科技有限公司 一种靶向apoCⅢ的CRISPR-Cas9系统及其应用
WO2017100431A2 (en) 2015-12-09 2017-06-15 Excision Biotherapeutics, Inc. Gene editing methods and compositions for eliminating risk of jc virus activation and pml (progressive multifocal leukoencephalopathy) during immunosuppresive therapy
WO2017100158A1 (en) 2015-12-11 2017-06-15 Danisco Us Inc. Methods and compositions for enhanced nuclease-mediated genome modification and reduced off-target site effects
CN105463003A (zh) 2015-12-11 2016-04-06 扬州大学 一种消除卡那霉素耐药基因活性的重组载体及其构建方法
CN105296537A (zh) 2015-12-12 2016-02-03 西南大学 一种基于睾丸内注射的基因定点编辑技术
CN105400773B (zh) 2015-12-14 2018-06-26 同济大学 应用于大规模筛选癌症基因的CRISPR/Cas9富集测序方法
WO2017105350A1 (en) 2015-12-14 2017-06-22 Cellresearch Corporation Pte Ltd A method of generating a mammalian stem cell carrying a transgene, a mammalian stem cell generated by the method and pharmaceuticals uses of the mammalian stem cell
WO2017106616A1 (en) 2015-12-17 2017-06-22 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Varicella zoster virus encoding regulatable cas9 nuclease
CN105463027A (zh) 2015-12-17 2016-04-06 中国农业大学 一种高肌肉量及肥厚型心肌病模型克隆猪的制备方法
NO343153B1 (en) 2015-12-17 2018-11-19 Hydra Systems As A method of assessing the integrity status of a barrier plug
EA201891212A1 (ru) 2015-12-18 2019-01-31 Сангамо Терапьютикс, Инк. Адресная дезорганизация клеточного рецептора гкгс
JP6700306B2 (ja) 2015-12-18 2020-05-27 国立研究開発法人科学技術振興機構 受精前の卵細胞、受精卵、及び標的遺伝子の改変方法
AU2016370726B2 (en) 2015-12-18 2022-12-08 Danisco Us Inc. Methods and compositions for polymerase II (Pol-II) based guide RNA expression
US11761007B2 (en) 2015-12-18 2023-09-19 The Scripps Research Institute Production of unnatural nucleotides using a CRISPR/Cas9 system
CA3008413A1 (en) 2015-12-18 2017-06-22 Sangamo Therapeutics, Inc. Targeted disruption of the t cell receptor
US20190233814A1 (en) 2015-12-18 2019-08-01 The Broad Institute, Inc. Novel crispr enzymes and systems
US11118194B2 (en) 2015-12-18 2021-09-14 The Regents Of The University Of California Modified site-directed modifying polypeptides and methods of use thereof
EP3390631B1 (en) 2015-12-18 2020-04-08 Danisco US Inc. Methods and compositions for t-rna based guide rna expression
WO2017109134A1 (en) 2015-12-22 2017-06-29 Curevac Ag Method for producing rna molecule compositions
WO2017112620A1 (en) 2015-12-22 2017-06-29 North Carolina State University Methods and compositions for delivery of crispr based antimicrobials
SG11201805320XA (en) 2015-12-23 2018-07-30 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of amyotrophic lateral sclerosis and/or frontal temporal lobular degeneration
CN105543270A (zh) 2015-12-24 2016-05-04 中国农业科学院作物科学研究所 双抗性CRISPR/Cas9载体及应用
CN105543266A (zh) 2015-12-25 2016-05-04 安徽大学 一种维吉尼亚链霉菌IBL14中的CRISPR-Cas系统及应用其进行基因编辑的方法
CN105505976A (zh) 2015-12-25 2016-04-20 安徽大学 一种维吉尼亚链霉菌ibl14产青霉素重组菌株的构建方法
BR112018013065A2 (pt) 2015-12-28 2018-12-11 Intellia Therapeutics Inc composições e métodos para o tratamento de hemoglobinopatias
EP4159848A1 (en) 2015-12-29 2023-04-05 Monsanto Technology LLC Novel crispr-associated transposases and uses thereof
CN105441451B (zh) 2015-12-31 2019-03-22 暨南大学 一种特异靶向人ABCB1基因的sgRNA导向序列及应用
CN105567735A (zh) 2016-01-05 2016-05-11 华东师范大学 一种凝血因子基因突变的定点修复载体系统及方法
CN108473986A (zh) 2016-01-08 2018-08-31 诺维信公司 芽孢杆菌宿主细胞的基因组编辑
CN105647922A (zh) 2016-01-11 2016-06-08 中国人民解放军疾病预防控制所 基于一种新gRNA序列的CRISPR-Cas9系统在制备乙肝治疗药物中的应用
US11441146B2 (en) 2016-01-11 2022-09-13 Christiana Care Health Services, Inc. Compositions and methods for improving homogeneity of DNA generated using a CRISPR/Cas9 cleavage system
US11427837B2 (en) 2016-01-12 2022-08-30 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for enhanced genome editing
CA3011458A1 (en) 2016-01-14 2017-07-20 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Genome editing for treating glioblastoma
US20190024079A1 (en) 2016-01-14 2019-01-24 Memphis Meats, Inc. Methods for extending the replicative capacity of somatic cells during an ex vivo cultivation process
SG11201805993UA (en) 2016-01-15 2018-08-30 Jackson Lab Genetically modified non-human mammals by multi-cycle electroporation of cas9 protein
WO2017126987A1 (ru) 2016-01-18 2017-07-27 Анатолий Викторович ЗАЗУЛЯ Эритроциты для направленного транспорта лекарственного средства
CN105567738A (zh) 2016-01-18 2016-05-11 南开大学 使用基因组编辑技术CRISPR-Cas9诱导CCR5Δ32缺失的方法
CN105567734A (zh) 2016-01-18 2016-05-11 丹弥优生物技术(湖北)有限公司 一种基因组dna序列精准编辑方法
JP6914274B2 (ja) 2016-01-22 2021-08-04 ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド Crisprcpf1の結晶構造
US20190038770A1 (en) 2016-01-25 2019-02-07 Excision Biotherapeutics,Inc. Rna guided eradication of human jc virus and other polyomaviruses
CN105567689B (zh) 2016-01-25 2019-04-09 重庆威斯腾生物医药科技有限责任公司 CRISPR/Cas9靶向敲除人TCAB1基因及其特异性gRNA
RU2018130640A (ru) 2016-01-25 2020-02-25 Эксижн Биотерапьютикс Способы и композиции для направляемого рнк лечения вич-инфекции
CN105543228A (zh) 2016-01-25 2016-05-04 宁夏农林科学院 一种快速将水稻转化为香稻的方法
EP3199632A1 (en) 2016-01-26 2017-08-02 ACIB GmbH Temperature-inducible crispr/cas system
CN105567688A (zh) 2016-01-27 2016-05-11 武汉大学 一种可用于艾滋病基因治疗的CRISPR/SaCas9系统
CA3051195A1 (en) 2016-01-29 2017-08-03 The Trustees Of Princeton University Split inteins with exceptional splicing activity
EP3409776A4 (en) 2016-01-30 2019-12-25 Bonac Corporation ARN UNIQUE ARTIFICIAL GUIDE AND ITS USE
CN105647968B (zh) 2016-02-02 2019-07-23 浙江大学 一种CRISPR/Cas9工作效率快速测试系统及其应用
CN107022562B (zh) 2016-02-02 2020-07-17 中国种子集团有限公司 利用CRISPR/Cas9系统对玉米基因定点突变的方法
CN105671083B (zh) 2016-02-03 2017-09-29 安徽柯顿生物科技有限公司 PD‑1基因重组病毒质粒及构建、重组逆转录病毒Lenti‑PD‑1‑Puro及包装与应用
WO2017136794A1 (en) 2016-02-03 2017-08-10 Massachusetts Institute Of Technology Structure-guided chemical modification of guide rna and its applications
WO2017136520A1 (en) 2016-02-04 2017-08-10 President And Fellows Of Harvard College Mitochondrial genome editing and regulation
WO2017136629A1 (en) 2016-02-05 2017-08-10 Regents Of The University Of Minnesota Vectors and system for modulating gene expression
WO2017139264A1 (en) 2016-02-09 2017-08-17 President And Fellows Of Harvard College Dna-guided gene editing and regulation
CA3048963A1 (en) 2016-02-11 2017-08-17 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for modifying a mutant dystrophin gene in a cell's genome
RU2016104674A (ru) 2016-02-11 2017-08-16 Анатолий Викторович Зазуля Устройство модификации эритроцита с механизмом направленного транспорта лекарственного средства для функций генной терапии crispr/cas9
AU2017219605B2 (en) 2016-02-15 2023-04-13 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Excision of retroviral nucleic acid sequences
US9896696B2 (en) 2016-02-15 2018-02-20 Benson Hill Biosystems, Inc. Compositions and methods for modifying genomes
CN105647962A (zh) 2016-02-15 2016-06-08 浙江大学 运用CRISPR-Cas9系统敲除水稻MIRNA393b茎环序列的基因编辑方法
CN105647969B (zh) 2016-02-16 2020-12-15 湖南师范大学 一种基因敲除选育stat1a基因缺失型斑马鱼的方法
US11136597B2 (en) 2016-02-16 2021-10-05 Yale University Compositions for enhancing targeted gene editing and methods of use thereof
CN105594664B (zh) 2016-02-16 2018-10-02 湖南师范大学 一种基因敲除选育stat1a基因缺失型斑马鱼的方法
CN105624187A (zh) 2016-02-17 2016-06-01 天津大学 酿酒酵母基因组定点突变的方法
EP3417065A4 (en) 2016-02-18 2019-07-17 President and Fellows of Harvard College METHOD AND SYSTEMS FOR MOLECULAR RECORDING BY CRISPR-CAS SYSTEM
CN105646719B (zh) 2016-02-24 2019-12-20 无锡市妇幼保健院 一种高效定点转基因的工具及其应用
AU2017223964A1 (en) 2016-02-25 2018-09-06 Agenovir Corporation Viral and oncoviral nuclease treatment
US20170247703A1 (en) 2016-02-25 2017-08-31 Agenovir Corporation Antiviral nuclease methods
US20170246260A1 (en) 2016-02-25 2017-08-31 Agenovir Corporation Modified antiviral nuclease
WO2017147278A1 (en) 2016-02-25 2017-08-31 The Children's Medical Center Corporation Customized class switch of immunoglobulin genes in lymphoma and hybridoma by crispr/cas9 technology
CN114908093A (zh) 2016-02-26 2022-08-16 朗泽科技新西兰有限公司 用于c1固定菌的crispr/cas系统
US10538750B2 (en) 2016-02-29 2020-01-21 Agilent Technologies, Inc. Methods and compositions for blocking off-target nucleic acids from cleavage by CRISPR proteins
CN105671070B (zh) 2016-03-03 2019-03-19 江南大学 一种用于枯草芽孢杆菌基因组编辑的CRISPRCas9系统及其构建方法
WO2017152015A1 (en) 2016-03-04 2017-09-08 Editas Medicine, Inc. Crispr-cpf1-related methods, compositions and components for cancer immunotherapy
CN105821040B (zh) 2016-03-09 2018-12-14 李旭 联合免疫基因抑制高危型HPV表达的sgRNA、基因敲除载体及其应用
CN107177591A (zh) 2016-03-09 2017-09-19 北京大学 利用CRISPR技术编辑CCR5基因的sgRNA序列及其用途
CN105821039B (zh) 2016-03-09 2020-02-07 李旭 联合免疫基因抑制HBV复制的特异性sgRNA、表达载体及其应用
CN105861547A (zh) 2016-03-10 2016-08-17 黄捷 身份证号码永久嵌入基因组的方法
EP3426778A1 (en) 2016-03-11 2019-01-16 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Novel cas9 systems and methods of use
US20180112234A9 (en) 2016-03-14 2018-04-26 Intellia Therapeutics, Inc. Methods and compositions for gene editing
CN117821458A (zh) 2016-03-14 2024-04-05 爱迪塔斯医药公司 用于治疗β-血红蛋白病的CRISPR/CAS相关方法和组合物
CA3029735A1 (en) 2016-03-15 2017-09-21 University Of Massachusetts Anti-crispr compounds and methods of use
EP3430332B1 (en) 2016-03-15 2020-01-01 Carrier Corporation Refrigerated sales cabinet
EP3219799A1 (en) 2016-03-17 2017-09-20 IMBA-Institut für Molekulare Biotechnologie GmbH Conditional crispr sgrna expression
US20200291370A1 (en) 2016-03-18 2020-09-17 President And Fellows Of Harvard College Mutant Cas Proteins
WO2017165862A1 (en) 2016-03-25 2017-09-28 Editas Medicine, Inc. Systems and methods for treating alpha 1-antitrypsin (a1at) deficiency
EP3433363A1 (en) 2016-03-25 2019-01-30 Editas Medicine, Inc. Genome editing systems comprising repair-modulating enzyme molecules and methods of their use
WO2017172644A2 (en) 2016-03-28 2017-10-05 The Charles Stark Draper Laboratory, Inc. Bacteria identification and antibiotic susceptibility profiling device
CN106047803A (zh) 2016-03-28 2016-10-26 青岛市胶州中心医院 CRISPR/Cas9靶向敲除兔BMP2基因的细胞模型及其应用
JP7245651B2 (ja) 2016-03-30 2023-03-24 インテリア セラピューティクス,インコーポレイテッド Crispr/cas構成成分のための脂質ナノ粒子製剤
WO2017173004A1 (en) 2016-03-30 2017-10-05 Mikuni Takayasu A method for in vivo precise genome editing
WO2017172860A1 (en) 2016-03-31 2017-10-05 President And Fellows Of Harvard College Methods and compositions for the single tube preparation of sequencing libraries using cas9
US20190093128A1 (en) 2016-03-31 2019-03-28 The Regents Of The University Of California Methods for genome editing in zygotes
US10301619B2 (en) 2016-04-01 2019-05-28 New England Biolabs, Inc. Compositions and methods relating to synthetic RNA polynucleotides created from synthetic DNA oligonucleotides
CN106167525B (zh) 2016-04-01 2019-03-19 北京康明百奥新药研发有限公司 筛选超低岩藻糖细胞系的方法和应用
IL299000A (en) 2016-04-04 2023-02-01 Eth Zuerich A mammalian cell line for protein production and a breeding library
WO2017176529A1 (en) 2016-04-06 2017-10-12 Temple Univesity-Of The Commonwealth System Of Higher Education Compositions for eradicating flavivirus infections in subjects
CN105802980A (zh) 2016-04-08 2016-07-27 北京大学 Gateway兼容性CRISPR/Cas9系统及其应用
CN106399306B (zh) 2016-04-12 2019-11-05 西安交通大学第一附属医院 靶向人lncRNA-UCA1抑制膀胱癌的sgRNA、基因载体及其应用
US20190127713A1 (en) 2016-04-13 2019-05-02 Duke University Crispr/cas9-based repressors for silencing gene targets in vivo and methods of use
EP3443088A1 (en) 2016-04-13 2019-02-20 Editas Medicine, Inc. Grna fusion molecules, gene editing systems, and methods of use thereof
US11236313B2 (en) 2016-04-13 2022-02-01 Editas Medicine, Inc. Cas9 fusion molecules, gene editing systems, and methods of use thereof
SG11201808920RA (en) 2016-04-14 2018-11-29 Boco Silicon Valley Inc Genome editing of human neural stem cells using nucleases
EP3442596A1 (en) 2016-04-14 2019-02-20 Université de Lausanne Treatment and/or prevention of dna-triplet repeat diseases or disorders
CN105821116A (zh) 2016-04-15 2016-08-03 扬州大学 一种绵羊mstn基因定向敲除及其影响成肌分化的检测方法
WO2017181107A2 (en) 2016-04-16 2017-10-19 Ohio State Innovation Foundation Modified cpf1 mrna, modified guide rna, and uses thereof
WO2017184334A1 (en) 2016-04-18 2017-10-26 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Generation of genetically engineered animals by crispr/cas9 genome editing in spermatogonial stem cells
WO2017182468A1 (en) 2016-04-18 2017-10-26 Ruprecht-Karls-Universität Heidelberg Means and methods for inactivating therapeutic dna in a cell
KR102670601B1 (ko) 2016-04-19 2024-05-29 더 브로드 인스티튜트, 인코퍼레이티드 신규한 crispr 효소 및 시스템
CN106086062A (zh) 2016-04-19 2016-11-09 上海市农业科学院 一种获得番茄基因组定点敲除突变体的方法
WO2017189308A1 (en) 2016-04-19 2017-11-02 The Broad Institute Inc. Novel crispr enzymes and systems
US11286478B2 (en) 2016-04-19 2022-03-29 The Broad Institute, Inc. Cpf1 complexes with reduced indel activity
CN105886616B (zh) 2016-04-20 2020-08-07 广东省农业科学院农业生物基因研究中心 一种用于猪基因编辑的高效特异性sgRNA识别位点引导序列及其筛选方法
CN107304435A (zh) 2016-04-22 2017-10-31 中国科学院青岛生物能源与过程研究所 一种Cas9/RNA系统及其应用
CN105821075B (zh) 2016-04-22 2017-09-12 湖南农业大学 一种茶树咖啡因合成酶CRISPR/Cas9基因组编辑载体的构建方法
WO2017189336A1 (en) 2016-04-25 2017-11-02 The Regents Of The University Of California Methods and compositions for genomic editing
CN105861552B (zh) 2016-04-25 2019-10-11 西北农林科技大学 一种T7 RNA聚合酶介导的CRISPR/Cas9基因编辑系统的构建方法
CN107326046A (zh) 2016-04-28 2017-11-07 上海邦耀生物科技有限公司 一种提高外源基因同源重组效率的方法
CN105821049B (zh) 2016-04-29 2019-06-04 中国农业大学 一种Fbxo40基因敲除猪的制备方法
CN105886534A (zh) 2016-04-29 2016-08-24 苏州溯源精微生物科技有限公司 一种抑制肿瘤转移的方法
BR112018068934A2 (pt) 2016-04-29 2019-01-22 Basf Plant Science Co Gmbh método de modificação de moléculas de ácido nucleico alvo (na alvo) em células, molécula, molécula de funa recombinante, vetor e seu uso, sistema de vetor, sistema de modificação de na alvo em células, composição
US20190144846A1 (en) 2016-05-01 2019-05-16 Neemo Inc Harnessing heterologous and endogenous CRISPR-Cas machineries for efficient markerless genome editing in Clostridium
WO2017192573A1 (en) 2016-05-02 2017-11-09 Massachusetts Institute Of Technology Nanoparticle conjugates of highly potent toxins and intraperitoneal administration of nanoparticles for treating or imaging cancer
WO2017191210A1 (en) 2016-05-04 2017-11-09 Novozymes A/S Genome editing by crispr-cas9 in filamentous fungal host cells
CN105950639A (zh) 2016-05-04 2016-09-21 广州美格生物科技有限公司 金黄色葡萄球菌CRISPR/Cas9系统的制备及其在构建小鼠模型中的应用
WO2017190664A1 (zh) 2016-05-05 2017-11-09 苏州吉玛基因股份有限公司 化学合成的crRNA和修饰crRNA在CRISPR/Cpf1基因编辑系统中的应用
ES2957660T3 (es) 2016-05-05 2024-01-23 Univ Duke Composiciones relacionadas con crispr/cas para tratar la distrofia muscular de duchenne
CN105907785B (zh) 2016-05-05 2020-02-07 苏州吉玛基因股份有限公司 化学合成的crRNA用于CRISPR/Cpf1系统在基因编辑中的应用
WO2017192172A1 (en) 2016-05-05 2017-11-09 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Rna guided eradication of varicella zoster virus
CN106244591A (zh) 2016-08-23 2016-12-21 苏州吉玛基因股份有限公司 修饰crRNA在CRISPR/Cpf1基因编辑系统中的应用
CN105985985B (zh) 2016-05-06 2019-12-31 苏州大学 Crispr技术编辑并用igf优化的异体间充质干细胞的制备方法及在治疗心梗中应用
CN109414449A (zh) 2016-05-06 2019-03-01 托德·M·伍尔夫 利用和不利用可设计核酸酶编辑基因组的改进方法
WO2017196768A1 (en) 2016-05-09 2017-11-16 President And Fellows Of Harvard College Self-targeting guide rnas in crispr system
JP2019519250A (ja) 2016-05-10 2019-07-11 ユナイテッド ステイツ ガバメント アズ リプレゼンテッド バイ ザ デパートメント オブ ベテランズ アフェアーズUnited States Government As Represented By The Department Of Veterans Affairs Hiv−1感染と複製に必須な遺伝子を切断するcrispr/casの構築物のレンチウィルスによる送達
CN105861554B (zh) 2016-05-10 2020-01-31 华南农业大学 一种基于对Rbmy基因进行编辑来实现动物性别控制的方法和应用
US20200325483A1 (en) 2016-05-12 2020-10-15 Brian P. Hanley Safe delivery of crispr and other gene therapies to large fractions of somatic cells in humans and animals
WO2017197238A1 (en) 2016-05-12 2017-11-16 President And Fellows Of Harvard College Aav split cas9 genome editing and transcriptional regulation
CN107365786A (zh) 2016-05-12 2017-11-21 中国科学院微生物研究所 一种将spacer序列克隆至CRISPR-Cas9系统中的方法及其应用
CN105838733A (zh) 2016-05-18 2016-08-10 云南省农业科学院花卉研究所 Cas9 介导的香石竹基因编辑载体和应用
CN105907758B (zh) 2016-05-18 2020-06-05 世翱(上海)生物医药科技有限公司 CRISPR-Cas9引导序列及其引物、转基因表达载体及其构建方法
CN106011171B (zh) 2016-05-18 2019-10-11 西北农林科技大学 一种利用CRISPR/Cas9技术基于SSA修复的基因无缝编辑方法
EP3457840B1 (en) 2016-05-20 2024-04-10 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Methods for breaking immunological tolerance using multiple guide rnas
CN106446600B (zh) 2016-05-20 2019-10-18 同济大学 一种基于CRISPR/Cas9的sgRNA的设计方法
WO2017205290A1 (en) 2016-05-23 2017-11-30 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Bypassing the pam requirement of the crispr-cas system
WO2017205423A1 (en) 2016-05-23 2017-11-30 Washington University Pulmonary targeted cas9/crispr for in vivo editing of disease genes
CN105950560B (zh) 2016-05-24 2019-07-23 苏州系统医学研究所 人源化pd-l1肿瘤细胞系及具有该细胞系的动物模型与应用
CN106011167B (zh) 2016-05-27 2019-11-01 上海交通大学 雄性不育基因OsDPW2的应用及水稻育性恢复的方法
WO2017207589A1 (en) 2016-06-01 2017-12-07 Kws Saat Se Hybrid nucleic acid sequences for genome engineering
US10266851B2 (en) 2016-06-02 2019-04-23 Sigma-Aldrich Co. Llc Using programmable DNA binding proteins to enhance targeted genome modification
WO2017208247A1 (en) 2016-06-02 2017-12-07 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Ltd. Assay for the removal of methyl-cytosine residues from dna
US11140883B2 (en) 2016-06-03 2021-10-12 Auburn University Gene editing of reproductive hormones to sterilize aquatic animals
AU2017277810A1 (en) 2016-06-03 2018-12-06 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Negative feedback regulation of HIV-1 by gene editing strategy
US20190256844A1 (en) 2016-06-07 2019-08-22 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Rna guided compositions for preventing and treating hepatitis b virus infections
CN106119275A (zh) 2016-06-07 2016-11-16 湖北大学 基于CRISPR/Cas9技术将非糯性水稻株系改造成糯性株系的打靶载体和方法
US10767175B2 (en) 2016-06-08 2020-09-08 Agilent Technologies, Inc. High specificity genome editing using chemically modified guide RNAs
CN106086008B (zh) 2016-06-10 2019-03-12 中国农业科学院植物保护研究所 烟粉虱MED隐种TRP基因的CRISPR/cas9系统及其应用
US11779657B2 (en) 2016-06-10 2023-10-10 City Of Hope Compositions and methods for mitochondrial genome editing
CN106434752A (zh) 2016-06-14 2017-02-22 南通大学附属医院 敲除Wnt3a基因的过程及其验证方法
KR20190016970A (ko) 2016-06-14 2019-02-19 파이어니어 하이 부렛드 인터내쇼날 인코포레이팃드 식물 게놈 변형을 위한 cpf1 엔도뉴클레아제의 용도
CN106167821A (zh) 2016-06-16 2016-11-30 郑州大学 一种金黄色葡萄球菌crispr位点检测试剂盒及检测方法
CN105950633B (zh) 2016-06-16 2019-05-03 复旦大学 基因OsARF4在控制水稻粒长和千粒重中的应用
CN106167808A (zh) 2016-06-16 2016-11-30 郑州大学 一种基于CRISPR/Cas9技术消除mecA质粒的方法
EP3472311A4 (en) 2016-06-17 2020-03-04 Montana State University BIDIRECTIONAL TARGETING FOR GENOMEDITATION
CN105950626B (zh) 2016-06-17 2018-09-28 新疆畜牧科学院生物技术研究所 基于CRISPR/Cas9获得不同毛色绵羊的方法及靶向ASIP基因的sgRNA
US11788083B2 (en) 2016-06-17 2023-10-17 The Broad Institute, Inc. Type VI CRISPR orthologs and systems
US20190330603A1 (en) 2016-06-17 2019-10-31 Genesis Technologies Limited Crispr-cas system, materials and methods
EP3472310A1 (en) 2016-06-20 2019-04-24 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Novel cas systems and methods of use
AU2017282623B2 (en) 2016-06-20 2023-09-21 Keygene N.V. Method for targeted DNA alteration in plant cells
US20170362635A1 (en) 2016-06-20 2017-12-21 University Of Washington Muscle-specific crispr/cas9 editing of genes
WO2017223107A1 (en) 2016-06-20 2017-12-28 Unity Biotechnology, Inc. Genome modifying enzyme therapy for diseases modulated by senescent cells
CN106148370A (zh) 2016-06-21 2016-11-23 苏州瑞奇生物医药科技有限公司 肥胖症大鼠动物模型和构建方法
AU2017281497B2 (en) 2016-06-22 2023-04-06 Proqr Therapeutics Ii B.V. Single-stranded RNA-editing oligonucleotides
JP2019522481A (ja) 2016-06-22 2019-08-15 アイカーン スクール オブ メディシン アット マウント サイナイ 自己切断リボザイムを利用したrnaのウイルス送達およびそのcrisprベースの適用
CN106047877B (zh) 2016-06-24 2019-01-11 中山大学附属第一医院 一种靶向敲除FTO基因的sgRNA及CRISPR/Cas9慢病毒系统与应用
CN105925608A (zh) 2016-06-24 2016-09-07 广西壮族自治区水牛研究所 一种利用CRISPR-Cas9靶向敲除ALK6基因的方法
CN106119283A (zh) 2016-06-24 2016-11-16 广西壮族自治区水牛研究所 一种利用CRISPR‑Cas9靶向敲除MSTN基因的方法
CN106148286B (zh) 2016-06-29 2019-10-29 牛刚 一种用于检测热原的细胞模型的构建方法和细胞模型及热原检测试剂盒
US20210222164A1 (en) 2016-06-29 2021-07-22 The Broad Institute, Inc. Crispr-cas systems having destabilization domain
AU2017286835B2 (en) 2016-06-29 2023-12-14 Crispr Therapeutics Ag Compositions and methods for gene editing
WO2018005691A1 (en) 2016-06-29 2018-01-04 The Regents Of The University Of California Efficient genetic screening method
US10927383B2 (en) 2016-06-30 2021-02-23 Ethris Gmbh Cas9 mRNAs
US10892034B2 (en) 2016-07-01 2021-01-12 Microsoft Technology Licensing, Llc Use of homology direct repair to record timing of a molecular event
US20180004537A1 (en) 2016-07-01 2018-01-04 Microsoft Technology Licensing, Llc Molecular State Machines
WO2018005117A1 (en) 2016-07-01 2018-01-04 Microsoft Technology Licensing, Llc Storage through iterative dna editing
KR20190039703A (ko) 2016-07-05 2019-04-15 더 존스 홉킨스 유니버시티 Crispr/cas9-기반 조성물 및 망막 변성을 치료하기 위한 방법
US20190185847A1 (en) 2016-07-06 2019-06-20 Novozymes A/S Improving a Microorganism by CRISPR-Inhibition
CN106191057B (zh) 2016-07-06 2018-12-25 中山大学 一种用于敲除人CYP2E1基因的sgRNA序列、CYP2E1基因缺失细胞株的构建方法及其应用
CN106051058A (zh) 2016-07-07 2016-10-26 上海格昆机电科技有限公司 用于航天贮箱和粒子治疗仪的旋转机架及其传动机构
WO2018009822A1 (en) 2016-07-08 2018-01-11 Ohio State Innovation Foundation Modified nucleic acids, hybrid guide rnas, and uses thereof
CN107586777A (zh) 2016-07-08 2018-01-16 上海吉倍生物技术有限公司 人PDCD1基因sgRNA的用途及其相关药物
CN106047930B (zh) 2016-07-12 2020-05-19 北京百奥赛图基因生物技术有限公司 一种PS1基因条件性敲除flox大鼠的制备方法
CN109689856A (zh) 2016-07-13 2019-04-26 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 用于海藻宿主细胞的CRISPR-Cas系统
US20190330659A1 (en) 2016-07-15 2019-10-31 Zymergen Inc. Scarless dna assembly and genome editing using crispr/cpf1 and dna ligase
CN106191061B (zh) 2016-07-18 2019-06-18 暨南大学 一种特异靶向人ABCG2基因的sgRNA导向序列及其应用
CN106190903B (zh) 2016-07-18 2019-04-02 华中农业大学 鸭疫里氏杆菌Cas9基因缺失突变株及其应用
CN106191062B (zh) 2016-07-18 2019-06-14 广东华南疫苗股份有限公司 一种tcr-/pd-1-双阴性t细胞及其构建方法
EP4275747A3 (en) 2016-07-19 2024-01-24 Duke University Therapeutic applications of cpf1-based genome editing
CN106434651B (zh) 2016-07-19 2021-05-18 广西大学 根癌农杆菌和CRISPR-Cas9介导的基因定点插入失活方法及其应用
US20190247436A1 (en) 2016-07-21 2019-08-15 Maxcyte, Inc. Methods and compositions for modifying genomic dna
CN106191107B (zh) 2016-07-22 2020-03-20 湖南农业大学 一种降低水稻籽粒落粒性的分子改良方法
CN106191064B (zh) 2016-07-22 2019-06-07 中国农业大学 一种制备mc4r基因敲除猪的方法
WO2018015444A1 (en) 2016-07-22 2018-01-25 Novozymes A/S Crispr-cas9 genome editing with multiple guide rnas in filamentous fungi
US20190270980A1 (en) 2016-07-25 2019-09-05 Mayo Foundation For Medical Education And Research Treating cancer
AU2017302551B2 (en) 2016-07-26 2023-04-27 The General Hospital Corporation Variants of CRISPR from Prevotella and Francisella 1 (Cpf1)
WO2018018979A1 (zh) 2016-07-26 2018-02-01 浙江大学 植物重组载体及无转基因成分的基因编辑植株的筛选方法
CN106222193B (zh) 2016-07-26 2019-09-20 浙江大学 一种重组载体及无转基因基因编辑植株的筛选方法
CN106191099A (zh) 2016-07-27 2016-12-07 苏州泓迅生物科技有限公司 一种基于CRISPR‑Cas9系统的酿酒酵母基因组并行多重编辑载体及其应用
CN106086061A (zh) 2016-07-27 2016-11-09 苏州泓迅生物科技有限公司 一种基于CRISPR‑Cas9系统的酿酒酵母基因组编辑载体及其应用
CN106434748A (zh) 2016-07-29 2017-02-22 中国科学院重庆绿色智能技术研究院 一种热激诱导型 Cas9 酶转基因斑马鱼的研制及应用
GB201613135D0 (en) 2016-07-29 2016-09-14 Medical Res Council Genome editing
CN106191113B (zh) 2016-07-29 2020-01-14 中国农业大学 一种mc3r基因敲除猪的制备方法
CN106191114B (zh) 2016-07-29 2020-02-11 中国科学院重庆绿色智能技术研究院 利用CRISPR-Cas9系统敲除鱼类MC4R基因的育种方法
CN106191124B (zh) 2016-07-29 2019-10-11 中国科学院重庆绿色智能技术研究院 一种利用鱼卵保存液提高CRISPR-Cas9基因编辑和传代效率的鱼类育种方法
CN106011150A (zh) 2016-08-01 2016-10-12 云南纳博生物科技有限公司 一种水稻穗粒数Gn1a基因人工定点突变体及其应用
US11866733B2 (en) 2016-08-01 2024-01-09 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Human induced pluripotent stem cells for high efficiency genetic engineering
CN106434688A (zh) 2016-08-01 2017-02-22 云南纳博生物科技有限公司 一种水稻直立密穗dep1基因人工定点突变体及其应用
JP7184364B2 (ja) 2016-08-02 2022-12-06 国立大学法人京都大学 ゲノム編集のための方法
AU2017305404B2 (en) 2016-08-02 2023-11-30 Editas Medicine, Inc. Compositions and methods for treating CEP290 associated disease
AU2017306676B2 (en) 2016-08-03 2024-02-22 President And Fellows Of Harvard College Adenosine nucleobase editors and uses thereof
CN106282241A (zh) 2016-08-05 2017-01-04 无锡市第二人民医院 通过CRISPR/Cas9得到敲除bmp2a基因的斑马鱼的方法
CA3033327A1 (en) 2016-08-09 2018-02-15 President And Fellows Of Harvard College Programmable cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
KR101710026B1 (ko) 2016-08-10 2017-02-27 주식회사 무진메디 Cas9 단백질 및 가이드 RNA의 혼성체를 함유하는 나노 리포좀 전달체 조성물
CN106222203A (zh) 2016-08-10 2016-12-14 云南纳博生物科技有限公司 利用CRISPR/Cas技术获得家蚕丝素重链基因突变体及突变方法和应用
CN106172238B (zh) 2016-08-12 2019-01-22 中南大学 miR-124基因敲除小鼠动物模型的构建方法和应用
CN106222177B (zh) 2016-08-13 2018-06-26 江苏集萃药康生物科技有限公司 一种靶向人STAT6的CRISPR-Cas9系统及其用于治疗过敏性疾病的应用
WO2018035250A1 (en) 2016-08-17 2018-02-22 The Broad Institute, Inc. Methods for identifying class 2 crispr-cas systems
US11810649B2 (en) 2016-08-17 2023-11-07 The Broad Institute, Inc. Methods for identifying novel gene editing elements
WO2018035300A1 (en) 2016-08-17 2018-02-22 The Regents Of The University Of California Split trans-complementing gene-drive system for suppressing aedes aegypti mosquitos
WO2018035503A1 (en) 2016-08-18 2018-02-22 The Regents Of The University Of California Crispr-cas genome engineering via a modular aav delivery system
WO2018035423A1 (en) 2016-08-19 2018-02-22 Bluebird Bio, Inc. Genome editing enhancers
WO2018039145A1 (en) 2016-08-20 2018-03-01 Avellino Lab Usa, Inc. Single guide rna, crispr/cas9 systems, and methods of use thereof
CN106191116B (zh) 2016-08-22 2019-10-08 西北农林科技大学 基于CRISPR/Cas9的外源基因敲入整合系统及其建立方法和应用
CN106191071B (zh) 2016-08-22 2018-09-04 广州资生生物科技有限公司 一种CRISPR-Cas9系统及其用于治疗乳腺癌疾病的应用
CN106086028B (zh) 2016-08-23 2019-04-23 中国农业科学院作物科学研究所 一种通过基因组编辑提高水稻抗性淀粉含量的方法及其专用sgRNA
CN106244555A (zh) 2016-08-23 2016-12-21 广州医科大学附属第三医院 一种提高基因打靶的效率的方法及β‑球蛋白基因位点的碱基原位修复方法
PL3504229T3 (pl) 2016-08-24 2022-04-19 Sangamo Therapeutics, Inc. Regulacja ekspresji genów przy użyciu nukleaz poddanych inżynierii
CN106244609A (zh) 2016-08-24 2016-12-21 浙江理工大学 一种调节pi3k‑akt信号通路的非编码基因的筛选系统及筛选方法
WO2018039438A1 (en) 2016-08-24 2018-03-01 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
KR101856345B1 (ko) 2016-08-24 2018-06-20 경상대학교산학협력단 CRISPR/Cas9 시스템을 이용하여 APOBEC3H 및 APOBEC3CH 이중-넉아웃 고양이를 제조하는 방법
CN106109417A (zh) 2016-08-24 2016-11-16 李因传 一种肝细胞膜仿生脂质体药物载体、制作方法及其应用
EP3504327B1 (en) 2016-08-24 2021-10-06 Sangamo Therapeutics, Inc. Engineered target specific nucleases
CN106544357B (zh) 2016-08-25 2018-08-21 湖南杂交水稻研究中心 一种培育镉低积累籼稻品种的方法
CN106318973B (zh) 2016-08-26 2019-09-13 深圳市第二人民医院 一种基于CRISPR-Cas9的基因调控装置及基因调控方法
CN106350540A (zh) 2016-08-26 2017-01-25 苏州系统医学研究所 一种由慢病毒介导的高效可诱导型CRISPR/Cas9基因敲除载体及其应用
CN107784200B (zh) 2016-08-26 2020-11-06 深圳华大生命科学研究院 一种筛选新型CRISPR-Cas系统的方法和装置
CN106399375A (zh) 2016-08-31 2017-02-15 南京凯地生物科技有限公司 利用CRISPR/Cas9敲除人PD‑1基因构建靶向CD19CAR‑T细胞的方法
CN106399367A (zh) 2016-08-31 2017-02-15 深圳市卫光生物制品股份有限公司 提高crispr介导的同源重组效率的方法
CN106480097A (zh) 2016-10-13 2017-03-08 南京凯地生物科技有限公司 利用CRISPR/Cas9技术敲除人PD‑1基因构建可靶向MSLN新型CAR‑T细胞的方法及其应用
CN107794272B (zh) 2016-09-06 2021-10-12 中国科学院上海营养与健康研究所 一种高特异性的crispr基因组编辑体系
CN106399377A (zh) 2016-09-07 2017-02-15 同济大学 一种基于CRISPR/Cas9高通量技术筛选药物靶点基因的方法
CN106367435B (zh) 2016-09-07 2019-11-08 电子科技大学 一种水稻miRNA定向敲除的方法
WO2018048827A1 (en) 2016-09-07 2018-03-15 Massachusetts Institute Of Technology Rna-guided endonuclease-based dna assembly
CN106399311A (zh) 2016-09-07 2017-02-15 同济大学 用于Chip‑seq全基因组结合谱的内源蛋白标记的方法
WO2018049168A1 (en) 2016-09-09 2018-03-15 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University High-throughput precision genome editing
CN107574179B (zh) 2016-09-09 2018-07-10 康码(上海)生物科技有限公司 一种为克鲁维酵母优化的CRISPR/Cas9高效基因编辑系统
WO2018051347A1 (en) 2016-09-14 2018-03-22 Yeda Research And Development Co. Ltd. Crisp-seq, an integrated method for massively parallel single cell rna-seq and crispr pooled screens
CN106318934B (zh) 2016-09-21 2020-06-05 上海交通大学 胡萝卜β(1,2)木糖转移酶的基因全序列及用于转染双子叶植物的CRISPR/CAS9的质粒构建
US20180127786A1 (en) 2016-09-23 2018-05-10 Casebia Therapeutics Limited Liability Partnership Compositions and methods for gene editing
CN109715804A (zh) 2016-09-23 2019-05-03 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 用于宿主细胞的指导rna表达系统
CN106957858A (zh) 2016-09-23 2017-07-18 西北农林科技大学 一种利用CRISPR/Cas9系统共同敲除绵羊MSTN、ASIP、BCO2基因的方法
WO2018062866A2 (en) 2016-09-28 2018-04-05 Cellivery Therapeutics, Inc. CELL-PERMEABLE (CP)-Cas9 RECOMBINANT PROTEIN AND USES THEREOF
CN106480027A (zh) 2016-09-30 2017-03-08 重庆高圣生物医药有限责任公司 CRISPR/Cas9 靶向敲除人PD‑1基因及其特异性gRNA
AU2017335890B2 (en) 2016-09-30 2024-05-09 The Regents Of The University Of California RNA-guided nucleic acid modifying enzymes and methods of use thereof
CN107880132B (zh) 2016-09-30 2022-06-17 北京大学 一种融合蛋白及使用其进行同源重组的方法
WO2018064516A1 (en) 2016-09-30 2018-04-05 Monsanto Technology Llc Method for selecting target sites for site-specific genome modification in plants
CN107881184B (zh) 2016-09-30 2021-08-27 中国科学院分子植物科学卓越创新中心 一种基于Cpf1的DNA体外拼接方法
WO2018064352A1 (en) 2016-09-30 2018-04-05 The Regents Of The University Of California Rna-guided nucleic acid modifying enzymes and methods of use thereof
US11730823B2 (en) 2016-10-03 2023-08-22 President And Fellows Of Harvard College Delivery of therapeutic RNAs via ARRDC1-mediated microvesicles
WO2018067846A1 (en) 2016-10-05 2018-04-12 President And Fellows Of Harvard College Methods of crispr mediated genome modulation in v. natriegens
US10669539B2 (en) 2016-10-06 2020-06-02 Pioneer Biolabs, Llc Methods and compositions for generating CRISPR guide RNA libraries
CN110462034A (zh) 2016-10-07 2019-11-15 综合Dna技术公司 化脓链球菌cas9突变基因和由其编码的多肽
CN106479985A (zh) 2016-10-09 2017-03-08 上海吉玛制药技术有限公司 病毒介导的Cpf1蛋白在CRISPR/Cpf1基因编辑系统中的应用
IT201600102542A1 (it) 2016-10-12 2018-04-12 Univ Degli Studi Di Trento Plasmide e sistema lentivirale contenente un circuito autolimitante della Cas9 che ne incrementa la sicurezza.
WO2018071623A2 (en) 2016-10-12 2018-04-19 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Combination therapies for eradicating flavivirus infections in subjects
CN106434663A (zh) 2016-10-12 2017-02-22 遵义医学院 CRISPR/Cas9靶向敲除人ezrin基因增强子关键区的方法及其特异性gRNA
CN110214180A (zh) 2016-10-14 2019-09-06 哈佛大学的校长及成员们 核碱基编辑器的aav递送
CN106434782B (zh) 2016-10-14 2020-01-10 南京工业大学 一种产顺式-4-羟脯氨酸的方法
WO2018071663A1 (en) 2016-10-14 2018-04-19 Emendobio Inc. Rna compositions for genome editing
EP3525832A4 (en) 2016-10-14 2020-04-29 The General Hospital Corp. SITE SPECIFIC NUCLEASES WITH EPIGENETIC REGULATION
US11840694B2 (en) 2016-10-17 2023-12-12 Nanyang Technological University Truncated CRISPR-Cas proteins for DNA targeting
US10640810B2 (en) 2016-10-19 2020-05-05 Drexel University Methods of specifically labeling nucleic acids using CRISPR/Cas
WO2018081504A1 (en) 2016-10-28 2018-05-03 Editas Medicine, Inc. Crispr/cas-related methods and compositions for treating herpes simplex virus
WO2018080573A1 (en) 2016-10-28 2018-05-03 Massachusetts Institute Of Technology Crispr/cas global regulator screening platform
US20180127759A1 (en) 2016-10-28 2018-05-10 Massachusetts Institute Of Technology Dynamic genome engineering
EP3534384A4 (en) 2016-10-31 2020-06-24 Eguchi High Frequency Co., Ltd. REACTOR
US11795453B2 (en) 2016-10-31 2023-10-24 Emendobio, Inc. Compositions for genome editing
WO2018085288A1 (en) 2016-11-01 2018-05-11 President And Fellows Of Harvard College Inhibitors of rna guided nucleases and uses thereof
EP3535396A1 (en) 2016-11-01 2019-09-11 Novartis AG Methods and compositions for enhancing gene editing
GB201618507D0 (en) 2016-11-02 2016-12-14 Stichting Voor De Technische Wetenschappen And Wageningen Univ Microbial genome editing
CN106544353A (zh) 2016-11-08 2017-03-29 宁夏医科大学总医院 一种利用CRISPR‑Cas9清除鲍曼不动杆菌耐药性基因的方法
WO2018089664A1 (en) 2016-11-11 2018-05-17 The Regents Of The University Of California Variant rna-guided polypeptides and methods of use
CN106755088A (zh) 2016-11-11 2017-05-31 广东万海细胞生物科技有限公司 一种自体car‑t细胞制备方法及应用
AR110075A1 (es) 2016-11-14 2019-02-20 Inst Genetics & Developmental Biology Cas Un método para edición basal en plantas
CN106566838B (zh) 2016-11-14 2019-11-01 上海伯豪生物技术有限公司 一种基于CRISPR-Cas9技术的miR-126全长基因敲除试剂盒及其应用
CN106554969A (zh) 2016-11-15 2017-04-05 陕西理工学院 基于抑菌杀菌的多靶点CRISPR/Cas9表达载体
CN106754912B (zh) 2016-11-16 2019-11-08 上海交通大学 一类定向清除肝细胞中HBVcccDNA的质粒及制剂
EP3541932A4 (en) 2016-11-16 2021-03-03 The Regents of the University of California CRISPR-CAS9 INHIBITORS
US20180282722A1 (en) 2016-11-21 2018-10-04 Massachusetts Institute Of Technology Chimeric DNA:RNA Guide for High Accuracy Cas9 Genome Editing
CN106480067A (zh) 2016-11-21 2017-03-08 中国农业科学院烟草研究所 烟草NtNAC096基因控制烟草衰老的应用
US11136567B2 (en) 2016-11-22 2021-10-05 Integrated Dna Technologies, Inc. CRISPR/CPF1 systems and methods
CN110382695A (zh) 2016-11-28 2019-10-25 得克萨斯州大学系统董事会 通过crispr/cpf1介导的基因编辑来预防肌营养不良
CN106755091A (zh) 2016-11-28 2017-05-31 中国人民解放军第三军医大学第附属医院 基因敲除载体,mh7a细胞nlrp1基因敲除方法
CN106480036B (zh) 2016-11-30 2019-04-09 华南理工大学 一种具有启动子功能的dna片段及其应用
CA3045335A1 (en) 2016-12-01 2018-06-07 Universite Laval Crispr-based treatment of friedreich ataxia
CN106834323A (zh) 2016-12-01 2017-06-13 安徽大学 一种基于维吉尼亚链霉菌IBL14基因cas7‑5‑3的基因编辑方法
CN107043779B (zh) 2016-12-01 2020-05-12 中国农业科学院作物科学研究所 一种CRISPR/nCas9介导的定点碱基替换在植物中的应用
US9816093B1 (en) 2016-12-06 2017-11-14 Caribou Biosciences, Inc. Engineered nucleic acid-targeting nucleic acids
CN106701830B (zh) 2016-12-07 2020-01-03 湖南人文科技学院 一种敲除猪胚胎p66shc基因的方法
WO2018103686A1 (zh) 2016-12-07 2018-06-14 中国科学院上海生命科学研究院 叶绿体基因组编辑方法
EA201991369A1 (ru) 2016-12-08 2019-12-30 Интеллиа Терапьютикс, Инк. Модифицированные направляющие рнк
CN106544351B (zh) 2016-12-08 2019-09-10 江苏省农业科学院 CRISPR-Cas9体外敲除耐药基因mcr-1的方法及其专用细胞穿透肽
US11192929B2 (en) 2016-12-08 2021-12-07 Regents Of The University Of Minnesota Site-specific DNA base editing using modified APOBEC enzymes
WO2018107103A1 (en) 2016-12-09 2018-06-14 The Broad Institute, Inc. Crispr-systems for modifying a trait of interest in a plant
PT3551753T (pt) 2016-12-09 2022-09-02 Harvard College Diagnósticos baseados num sistema efetor de crispr
WO2018111947A1 (en) 2016-12-12 2018-06-21 Integrated Dna Technologies, Inc. Genome editing enhancement
US20190032131A1 (en) 2016-12-12 2019-01-31 Integrated Dna Technologies, Inc. Genome editing detection
CN107893074A (zh) 2016-12-13 2018-04-10 广东赤萌医疗科技有限公司 一种用于敲除CXCR4基因的gRNA、表达载体、敲除系统、试剂盒
AU2016432443B2 (en) 2016-12-14 2024-04-18 Stichting Voor De Technische Wetenschappen Thermostable Cas9 nucleases
WO2018109101A1 (en) 2016-12-14 2018-06-21 Wageningen Universiteit Thermostable cas9 nucleases
KR101748575B1 (ko) 2016-12-16 2017-06-20 주식회사 엠젠플러스 Ins 유전자 녹아웃 당뇨병 또는 당뇨병 합병증 동물모델 및 이의 제조방법
WO2018112336A1 (en) 2016-12-16 2018-06-21 Ohio State Innovation Foundation Systems and methods for dna-guided rna cleavage
WO2018112446A2 (en) 2016-12-18 2018-06-21 Selonterra, Inc. Use of apoe4 motif-mediated genes for diagnosis and treatment of alzheimer's disease
CN106755026A (zh) 2016-12-18 2017-05-31 吉林大学 sgRNA表达载体的构建及牙釉质钙化不全模型的建立
GB2605925B (en) 2016-12-23 2023-02-22 Harvard College Gene editing of PCSK9
WO2018119359A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 President And Fellows Of Harvard College Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection
CN106755424B (zh) 2016-12-26 2020-11-06 郑州大学 一种基于crispr的大肠杆菌st131系菌株检测引物、试剂盒及检测方法
CN107354173A (zh) 2016-12-26 2017-11-17 浙江省医学科学院 基于crispr技术和水动力尾静脉注射建立肝脏特异性敲除小鼠模型的方法
CN106755097A (zh) 2016-12-27 2017-05-31 安徽省农业科学院畜牧兽医研究所 一种山羊tlr4基因敲除载体及其构建方法
CN106834347A (zh) 2016-12-27 2017-06-13 安徽省农业科学院畜牧兽医研究所 一种山羊cdk2基因敲除载体及其构建方法
CN106755077A (zh) 2016-12-30 2017-05-31 华智水稻生物技术有限公司 利用crispr‑cas9技术对水稻cenh3基因定点突变的方法
CN106868008A (zh) 2016-12-30 2017-06-20 重庆高圣生物医药有限责任公司 CRISPR/Cas9靶向敲除人Lin28A基因及其特异性gRNA
CN106834341B (zh) 2016-12-30 2020-06-16 中国农业大学 一种基因定点突变载体及其构建方法和应用
CN106701763B (zh) 2016-12-30 2019-07-19 重庆高圣生物医药有限责任公司 CRISPR/Cas9靶向敲除人乙肝病毒P基因及其特异性gRNA
CN106701818B (zh) 2017-01-09 2020-04-24 湖南杂交水稻研究中心 一种培育水稻普通核不育系的方法
US20190352634A1 (en) 2017-01-11 2019-11-21 Oxford University Innovation Limited Crispr rna
CN107012164B (zh) 2017-01-11 2023-03-03 电子科技大学 CRISPR/Cpf1植物基因组定向修饰功能单元、包含该功能单元的载体及其应用
US20180258418A1 (en) 2017-01-17 2018-09-13 Institute For Basic Science Method of identifying genome-wide off-target sites of base editors by detecting single strand breaks in genomic dna
US20180201921A1 (en) 2017-01-18 2018-07-19 Excision Biotherapeutics, Inc. CRISPRs
CN106701823A (zh) 2017-01-18 2017-05-24 上海交通大学 生产无岩藻糖单克隆抗体的cho细胞系建立及其应用
CN107058372A (zh) 2017-01-18 2017-08-18 四川农业大学 一种应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法
CN106801056A (zh) 2017-01-24 2017-06-06 中国科学院广州生物医药与健康研究院 一种sgRNA及其构建的慢病毒载体和应用
JP2020505074A (ja) 2017-01-30 2020-02-20 カー・ヴェー・エス ザート エス・エー ウント コー. カー・ゲー・アー・アーKWS SAAT SE & Co. KGaA ゲノム工学のためのエンドヌクレアーゼに対する修復鋳型の結合
TWI608100B (zh) 2017-02-03 2017-12-11 國立清華大學 Cas9表達質體、大腸桿菌基因剪輯系統及其方法
WO2018148246A1 (en) 2017-02-07 2018-08-16 Massachusetts Institute Of Technology Methods and compositions for rna-guided genetic circuits
AU2018218280A1 (en) 2017-02-07 2019-08-29 The Regents Of The University Of California Gene therapy for haploinsufficiency
WO2018148647A2 (en) 2017-02-10 2018-08-16 Lajoie Marc Joseph Genome editing reagents and their use
IT201700016321A1 (it) 2017-02-14 2018-08-14 Univ Degli Studi Di Trento Mutanti di cas9 ad alta specificita' e loro applicazioni.
US20200063127A1 (en) 2017-02-15 2020-02-27 Massachusetts Institute Of Technology Dna writers, molecular recorders and uses thereof
CN106957855B (zh) 2017-02-16 2020-04-17 上海市农业科学院 使用CRISPR/Cas9技术靶向敲除水稻矮杆基因SD1的方法
WO2018152418A1 (en) 2017-02-17 2018-08-23 Temple University - Of The Commonwealth System Of Higher Education Gene editing therapy for hiv infection via dual targeting of hiv genome and ccr5
US20200224221A1 (en) 2017-02-20 2020-07-16 Institute Of Genetics And Developmental Biology, Chinese Academy Of Sciences Genome editing method
US11559588B2 (en) 2017-02-22 2023-01-24 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of Spinocerebellar Ataxia Type 1 (SCA1) and other Spinocerebellar Ataxia Type 1 Protein (ATXN1) gene related conditions or disorders
WO2018154412A1 (en) 2017-02-22 2018-08-30 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of merosin-deficient cogenital muscular dystrophy (mdcmd) and other laminin, alpha 2 (lama2) gene related conditions or disorders
EP3585897A1 (en) 2017-02-22 2020-01-01 CRISPR Therapeutics AG Materials and methods for treatment of dystrophic epidermolysis bullosa (deb) and other collagen type vii alpha 1 chain (col7a1) gene related conditions or disorders
WO2018156372A1 (en) 2017-02-22 2018-08-30 The Regents Of The University Of California Genetically modified non-human animals and products thereof
EP3585895A1 (en) 2017-02-22 2020-01-01 CRISPR Therapeutics AG Compositions and methods for gene editing
WO2018154418A1 (en) 2017-02-22 2018-08-30 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of early onset parkinson's disease (park1) and other synuclein, alpha (snca) gene related conditions or disorders
US11407997B2 (en) 2017-02-22 2022-08-09 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of primary hyperoxaluria type 1 (PH1) and other alanine-glyoxylate aminotransferase (AGXT) gene related conditions or disorders
EP3585894A1 (en) 2017-02-22 2020-01-01 CRISPR Therapeutics AG Compositions and methods for treatment of proprotein convertase subtilisin/kexin type 9 (pcsk9)-related disorders
US20200216857A1 (en) 2017-02-22 2020-07-09 Crispr Therapeutics Ag Materials and methods for treatment of spinocerebellar ataxia type 2 (sca2) and other spinocerebellar ataxia type 2 protein (atxn2) gene related conditions or disorders
CN106868031A (zh) 2017-02-24 2017-06-20 北京大学 一种基于分级组装的多个sgRNA串联并行表达的克隆方法及应用
WO2018161009A1 (en) 2017-03-03 2018-09-07 Yale University Aav-mediated direct in vivo crispr screen in glioblastoma
US11111492B2 (en) 2017-03-06 2021-09-07 Florida State University Research Foundation, Inc. Genome engineering methods using a cytosine-specific Cas9
US11898179B2 (en) 2017-03-09 2024-02-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
JP2020510439A (ja) 2017-03-10 2020-04-09 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シトシンからグアニンへの塩基編集因子
EP3595694A4 (en) 2017-03-14 2021-06-09 The Regents of The University of California CONSTRUCTION OF CAS9 CRISPR IMMUNE FURTIF
CN106978428A (zh) 2017-03-15 2017-07-25 上海吐露港生物科技有限公司 一种Cas蛋白特异结合靶标DNA、调控靶标基因转录的方法及试剂盒
CN111108220A (zh) 2017-03-15 2020-05-05 博德研究所 用于病毒检测的基于crispr效应系统的诊断
CN106906242A (zh) 2017-03-16 2017-06-30 重庆高圣生物医药有限责任公司 一种提高CRIPSR/Cas9靶向敲除基因产生非同源性末端接合效率的方法
CA3057330A1 (en) 2017-03-21 2018-09-27 Anthony P. Shuber Treating cancer with cas endonuclease complexes
KR20190130613A (ko) 2017-03-23 2019-11-22 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 핵산 프로그램가능한 dna 결합 단백질을 포함하는 핵염기 편집제
CN107012213A (zh) 2017-03-24 2017-08-04 南开大学 结直肠癌的生物标记物
PT3526324T (pt) 2017-03-28 2021-10-20 Locanabio Inc Proteína associada a crispr (cas)
CN106947780A (zh) 2017-03-28 2017-07-14 扬州大学 一种兔mstn基因的编辑方法
CN106906240A (zh) 2017-03-29 2017-06-30 浙江大学 运用CRISPR‑Cas9系统敲除大麦VE合成通路中的关键基因HPT的方法
KR20190134673A (ko) 2017-03-30 2019-12-04 고쿠리츠 다이가쿠 호진 교토 다이가쿠 게놈 편집에 의한 엑손 스키핑 유도 방법
CN108660161B (zh) 2017-03-31 2023-05-09 中国科学院脑科学与智能技术卓越创新中心 基于CRISPR/Cas9技术的制备无嵌合基因敲除动物的方法
CN107058358B (zh) 2017-04-01 2020-06-09 中国科学院微生物研究所 一种双spacer序列识别切割CRISPR-Cas9载体构建及其在疣孢菌中的应用
CN106967726B (zh) 2017-04-05 2020-12-29 华南农业大学 一种创建亚洲栽培稻与非洲栽培稻种间杂种亲和系的方法和应用
US9938288B1 (en) 2017-04-05 2018-04-10 President And Fellows Of Harvard College Macrocyclic compound and uses thereof
CN107142282A (zh) 2017-04-06 2017-09-08 中山大学 一种利用CRISPR/Cas9在哺乳动物细胞中实现大片段DNA定点整合的方法
CN107034229A (zh) 2017-04-07 2017-08-11 江苏贝瑞利生物科技有限公司 一种植物中高效筛选CRISPR/CAS9基因编辑系统候选sgRNA系统及应用
CN107058320B (zh) 2017-04-12 2019-08-02 南开大学 Il7r基因缺失斑马鱼突变体的制备及其应用
CN106916852B (zh) 2017-04-13 2020-12-04 上海科技大学 一种碱基编辑系统及其构建和应用方法
CN108728476A (zh) 2017-04-14 2018-11-02 复旦大学 一种利用crispr系统产生多样性抗体文库的方法
CN107298701B (zh) 2017-04-18 2020-10-30 上海大学 玉米转录因子ZmbZIP22及其应用
CN106957844A (zh) 2017-04-20 2017-07-18 华侨大学 一种能有效敲除HTLV‑1病毒基因组的CRISPR/Cas9的gRNA序列
US20200404891A1 (en) 2017-04-20 2020-12-31 Egenesis, Inc. Methods for generating genetically modified animals
WO2018195555A1 (en) 2017-04-21 2018-10-25 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Crispr/cas 9-mediated integration of polynucleotides by sequential homologous recombination of aav donor vectors
EP3612551A4 (en) 2017-04-21 2020-12-30 The General Hospital Corporation VARIANTS OF CPF1 (CAS12A) WITH MODIFIED PAM SPECIFICITY
WO2018197495A1 (en) 2017-04-24 2018-11-01 Dupont Nutrition Biosciences Aps Novel anti-crispr genes and proteins and methods of use
CN107043775B (zh) 2017-04-24 2020-06-16 中国农业科学院生物技术研究所 一种能促进棉花侧根发育的sgRNA及其应用
CN206970581U (zh) 2017-04-26 2018-02-06 重庆威斯腾生物医药科技有限责任公司 一种用于辅助CRISPR/cas9基因敲除的试剂盒
WO2018197020A1 (en) 2017-04-27 2018-11-01 Novozymes A/S Genome editing by crispr-cas9 using short donor oligonucleotides
WO2018202800A1 (en) 2017-05-03 2018-11-08 Kws Saat Se Use of crispr-cas endonucleases for plant genome engineering
CN107012174A (zh) 2017-05-04 2017-08-04 昆明理工大学 CRISPR/Cas9技术在获得家蚕锌指蛋白基因突变体中的应用
WO2018204493A1 (en) 2017-05-04 2018-11-08 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Compositions and methods for gene editing in t cells using crispr/cpf1
CN107254485A (zh) 2017-05-08 2017-10-17 南京农业大学 一种能够快速构建植物基因定点敲除载体的新反应体系
CN107129999A (zh) 2017-05-09 2017-09-05 福建省农业科学院畜牧兽医研究所 利用稳转CRISPR/Cas9系统对病毒基因组进行靶向编辑的方法
WO2018208755A1 (en) 2017-05-09 2018-11-15 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for tagging target proteins in proximity to a nucleotide sequence of interest
EP3622070A2 (en) 2017-05-10 2020-03-18 Editas Medicine, Inc. Crispr/rna-guided nuclease systems and methods
AU2018265022A1 (en) 2017-05-10 2019-11-21 The Regents Of The University Of California Directed editing of cellular RNA via nuclear delivery of CRISPR/Cas9
CN107130000B (zh) 2017-05-12 2019-12-17 浙江卫未生物医药科技有限公司 一种同时敲除KRAS基因和EGFR基因的CRISPR-Cas9系统及其应用
WO2018209320A1 (en) 2017-05-12 2018-11-15 President And Fellows Of Harvard College Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation
CN107012250B (zh) 2017-05-16 2021-01-29 上海交通大学 一种适用于CRISPR/Cas9系统的基因组DNA片段编辑精准度的分析方法及应用
CN106957831B (zh) 2017-05-16 2021-03-12 上海交通大学 一种Cas9核酸酶K918A及其用途
CN106967697B (zh) 2017-05-16 2021-03-26 上海交通大学 一种Cas9核酸酶G915F及其用途
CN106957830B (zh) 2017-05-16 2020-12-25 上海交通大学 一种Cas9核酸酶ΔF916及其用途
CN107326042A (zh) 2017-05-16 2017-11-07 上海交通大学 水稻tms10基因的定点敲除系统及其应用
CN106947750B (zh) 2017-05-16 2020-12-08 上海交通大学 一种Cas9核酸酶Q920P及其用途
CN106916820B (zh) 2017-05-16 2019-09-27 吉林大学 能有效编辑猪ROSA26基因的sgRNA及其应用
CN106987570A (zh) 2017-05-16 2017-07-28 上海交通大学 一种Cas9核酸酶R780A及其用途
CN106939303B (zh) 2017-05-16 2021-02-23 上海交通大学 一种Cas9核酸酶R919P及其用途
JP7364472B2 (ja) 2017-05-18 2023-10-18 ザ・ブロード・インスティテュート・インコーポレイテッド 標的化された核酸編集のための系、方法、及び組成物
EP3625359A4 (en) 2017-05-18 2021-03-03 Children's National Medical Center APTAMERIC AND NUCLEIC ACID PAYLOAD COMPOSITIONS AND METHODS OF USE
EP3625342B1 (en) 2017-05-18 2022-08-24 The Broad Institute, Inc. Systems, methods, and compositions for targeted nucleic acid editing
WO2018213771A1 (en) 2017-05-18 2018-11-22 Cargill, Incorporated Genome editing system
CN107043787B (zh) 2017-05-19 2017-12-26 南京医科大学 一种基于CRISPR/Cas9获得MARF1定点突变小鼠模型的构建方法和应用
CN107236737A (zh) 2017-05-19 2017-10-10 上海交通大学 特异靶向拟南芥ILK2基因的sgRNA序列及其应用
WO2018217852A1 (en) 2017-05-23 2018-11-29 Gettysburg College Crispr based tool for characterizing bacterial serovar diversity
CN107034188B (zh) 2017-05-24 2018-07-24 中山大学附属口腔医院 一种靶向骨的外泌体载体、CRISPR/Cas9基因编辑系统及应用
JP2020521446A (ja) 2017-05-25 2020-07-27 ザ ジェネラル ホスピタル コーポレイション 二部塩基エディター(bbe)構造およびii型−c−cas9ジンクフィンガー編集
US20200263186A1 (en) 2017-05-26 2020-08-20 North Carolina State University Altered guide rnas for modulating cas9 activity and methods of use
CN107287245B (zh) 2017-05-27 2020-03-17 南京农业大学 一种基于CRISPR/Cas9技术的Glrx1基因敲除动物模型的构建方法
CN107142272A (zh) 2017-06-05 2017-09-08 南京金斯瑞生物科技有限公司 一种控制大肠杆菌中质粒复制的方法
CN107034218A (zh) 2017-06-07 2017-08-11 浙江大学 用于猪APN基因编辑的靶向sgRNA、修饰载体及其制备方法和应用
CN107177595A (zh) 2017-06-07 2017-09-19 浙江大学 用于猪CD163基因编辑的靶向sgRNA、修饰载体及其制备方法和应用
CN107119071A (zh) 2017-06-07 2017-09-01 江苏三黍生物科技有限公司 一种降低植物直链淀粉含量的方法及应用
CN107236739A (zh) 2017-06-12 2017-10-10 上海捷易生物科技有限公司 CRISPR/SaCas9特异性敲除人CXCR4基因的方法
CN106987757A (zh) 2017-06-12 2017-07-28 苏州双金实业有限公司 一种耐腐蚀型奥氏体镍基合金
CN107227352A (zh) 2017-06-13 2017-10-03 西安医学院 基于eGFP的GPR120基因表达的检测方法及应用
CN107083392B (zh) 2017-06-13 2020-09-08 中国医学科学院病原生物学研究所 一种CRISPR/Cpf1基因编辑系统及其在分枝杆菌中的应用
CN107245502B (zh) 2017-06-14 2020-11-03 中国科学院武汉病毒研究所 Cd2结合蛋白(cd2ap)和其相互作用蛋白
CN107312798B (zh) 2017-06-16 2020-06-23 武汉大学 含特异靶向CCR5基因的gRNA序列的CRISPR/Cas9重组慢病毒载体及应用
CN107099850B (zh) 2017-06-19 2018-05-04 东北农业大学 一种通过酶切基因组构建CRISPR/Cas9基因组敲除文库的方法
CN107266541B (zh) 2017-06-20 2021-06-04 上海大学 玉米转录因子ZmbHLH167及其应用
CN107446951B (zh) 2017-06-20 2021-01-08 温氏食品集团股份有限公司 一种通过CRISPR/Cas9系统快速筛选重组鸡痘病毒的方法及其应用
CN107058328A (zh) 2017-06-22 2017-08-18 江苏三黍生物科技有限公司 一种提高植物直链淀粉含量的方法及应用
CN107099533A (zh) 2017-06-23 2017-08-29 东北农业大学 一种特异靶向猪IGFBP3基因的sgRNA导向序列及应用
US9982279B1 (en) 2017-06-23 2018-05-29 Inscripta, Inc. Nucleic acid-guided nucleases
CN107119053A (zh) 2017-06-23 2017-09-01 东北农业大学 一种特异靶向猪MC4R基因的sgRNA导向序列及其应用
CN107227307A (zh) 2017-06-23 2017-10-03 东北农业大学 一种特异靶向猪IRS1基因的sgRNA导向序列及其应用
CN107177631B (zh) 2017-06-26 2020-11-24 中国农业大学 利用CRISPR-CAS9技术敲除NRK细胞Slc22a2基因的方法
WO2019005886A1 (en) 2017-06-26 2019-01-03 The Broad Institute, Inc. CRISPR / CAS-CYTIDINE DEAMINASE COMPOSITIONS, SYSTEMS AND METHODS FOR TARGETED EDITING OF NUCLEIC ACIDS
CN107217075B (zh) 2017-06-28 2021-07-02 西安交通大学医学院第一附属医院 一种构建epo基因敲除斑马鱼动物模型的方法及引物、质粒与制备方法
CN107356793A (zh) 2017-07-01 2017-11-17 合肥东玖电气有限公司 一种防火电表箱
CN107312793A (zh) 2017-07-05 2017-11-03 新疆农业科学院园艺作物研究所 Cas9介导的番茄基因编辑载体及其应用
CN107190006A (zh) 2017-07-07 2017-09-22 南通大学附属医院 一种靶向IGF‑IR基因的sgRNA及其应用
CN107354156B (zh) 2017-07-19 2021-02-09 广州医科大学附属第五医院 一种敲除野生型T细胞TCR beta链的gRNA及方法
CN107400677B (zh) 2017-07-19 2020-05-22 江南大学 一种基于CRISPR-Cas9系统的地衣芽孢杆菌基因组编辑载体及其制备方法
CN107190008A (zh) 2017-07-19 2017-09-22 苏州吉赛基因测序科技有限公司 一种基于Crispr/cas9的捕获基因组目标序列的方法及其在高通量测序中的应用
CN107236741A (zh) 2017-07-19 2017-10-10 广州医科大学附属第五医院 一种敲除野生型T细胞TCR alpha链的gRNA及方法
CN107446954A (zh) 2017-07-28 2017-12-08 新乡医学院 一种sd大鼠t细胞缺失遗传模型的制备方法
CN107418974A (zh) 2017-07-28 2017-12-01 新乡医学院 一种利用单克隆细胞分选快速获得CRISPR/Cas9基因敲除稳定细胞株的方法
CN107267515B (zh) 2017-07-28 2020-08-25 重庆医科大学附属儿童医院 CRISPR/Cas9靶向敲除人CNE10基因及其特异性gRNA
CN107435069A (zh) 2017-07-28 2017-12-05 新乡医学院 一种细胞系CRISPR/Cas9基因敲除的快速检测方法
WO2019023680A1 (en) 2017-07-28 2019-01-31 President And Fellows Of Harvard College METHODS AND COMPOSITIONS FOR EVOLUTION OF BASIC EDITORS USING PHAGE-ASSISTED CONTINUOUS EVOLUTION (PACE)
CN107384922A (zh) 2017-07-28 2017-11-24 重庆医科大学附属儿童医院 CRISPR/Cas9靶向敲除人CNE9基因及其特异性gRNA
CN107435051B (zh) 2017-07-28 2020-06-02 新乡医学院 一种通过CRISPR/Cas9系统快速获得大片段缺失的细胞系基因敲除方法
CN107217042B (zh) 2017-07-31 2020-03-06 江苏东抗生物医药科技有限公司 一种生产无岩藻糖基化蛋白的基因工程细胞系及其建立方法
CN107446922A (zh) 2017-08-03 2017-12-08 无锡市第二人民医院 一种敲除人成骨细胞株中hepcidin基因的gRNA序列及其使用方法
CN107502618B (zh) 2017-08-08 2021-03-12 中国科学院微生物研究所 可控载体消除方法及易用型CRISPR-Cas9工具
CN107312785B (zh) 2017-08-09 2019-12-06 四川农业大学 OsKTN80b基因在降低水稻株高方面的应用
CN107365804B (zh) 2017-08-13 2019-12-20 中国人民解放军疾病预防控制所 一种使用温和噬菌体载体包装CRISPR-Cas9系统的方法
CN107384926B (zh) 2017-08-13 2020-06-26 中国人民解放军疾病预防控制所 一种靶向清除细菌耐药性质粒的CRISPR-Cas9系统及应用
CN107446923B (zh) 2017-08-13 2019-12-31 中国人民解放军疾病预防控制所 rAAV8-CRISPR-SaCas9系统及在制备乙肝治疗药物中的应用
CN107815463A (zh) 2017-08-15 2018-03-20 西南大学 CRISPR/Cas9技术介导miR167前体序列编辑体系的建立方法
CN107446924B (zh) 2017-08-16 2020-01-14 中国科学院华南植物园 一种基于CRISPR-Cas9的猕猴桃基因AcPDS编辑载体及其构建方法和应用
CN108034656A (zh) 2017-08-16 2018-05-15 四川省农业科学院生物技术核技术研究所 与水稻红褐色颖壳性状有关的sgRNA、CRISPR/Cas9载体、载体构建、应用
CN107384894B (zh) 2017-08-21 2019-10-22 华南师范大学 功能化氧化石墨烯高效运载CRISPR/Cas9用于基因编辑的方法
CN107557393B (zh) 2017-08-23 2020-05-08 中国科学院上海应用物理研究所 一种磁性纳米材料介导的CRISPR/Cas9 T细胞内递送系统及其制备方法和应用
CN107299114B (zh) 2017-08-23 2021-08-27 中国科学院分子植物科学卓越创新中心 一种高效的酵母菌染色体融合方法
CN107312795A (zh) 2017-08-24 2017-11-03 浙江省农业科学院 运用CRISPR/Cas9系统创制粉色果实番茄的基因编辑方法
CN107488649A (zh) 2017-08-25 2017-12-19 南方医科大学 一种Cpf1和p300核心结构域的融合蛋白、相应的DNA靶向激活系统和应用
CN107460196A (zh) 2017-08-25 2017-12-12 同济大学 一种免疫缺陷小鼠动物模型的构建方法及应用
CN107541525B (zh) 2017-08-26 2021-12-10 内蒙古大学 一种基于CRISPR/Cas9技术介导山羊Tβ4基因定点敲入的方法
CN107446932B (zh) 2017-08-29 2020-02-21 江西省农业科学院 一个控制水稻雄性生殖发育基因及其应用
US11319532B2 (en) 2017-08-30 2022-05-03 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising Gam
CN107519492B (zh) 2017-09-06 2019-01-25 武汉迈特维尔生物科技有限公司 使用CRISPR技术敲除miR-3187-3p在冠状动脉粥样硬化性心脏病中的应用
CN107641631A (zh) 2017-09-07 2018-01-30 浙江工业大学 一种由化学转化介导的基于CRISPR/Cas9系统敲除大肠杆菌基因的方法
CN107362372B (zh) 2017-09-07 2019-01-11 佛山波若恩生物科技有限公司 使用crispr技术在冠状动脉粥样硬化性心脏病中的应用
CN107502608B (zh) 2017-09-08 2020-10-16 中山大学 用于敲除人ALDH2基因的sgRNA、ALDH2基因缺失细胞株的构建方法及应用
CN107557455A (zh) 2017-09-15 2018-01-09 国家纳米科学中心 一种基于CRISPR‑Cas13a的特异性核酸片段的检测方法
CN107475300B (zh) 2017-09-18 2020-04-21 上海市同济医院 Ifit3-eKO1基因敲除小鼠动物模型的构建方法和应用
CN107557390A (zh) 2017-09-18 2018-01-09 江南大学 一种筛选cho细胞系高表达位点的方法
CN107523583A (zh) 2017-09-19 2017-12-29 安徽大学 一种源于I型CRISPR‑Cas系统中基因cas5‑3的原核基因编辑方法
CN107557373A (zh) 2017-09-19 2018-01-09 安徽大学 一种基于I‑B型CRISPR‑Cas系统基因cas3的基因编辑方法
CN107630041A (zh) 2017-09-19 2018-01-26 安徽大学 一种基于维吉尼亚链霉菌IBL14 I‑B型Cas系统的真核基因编辑方法
CN107630042A (zh) 2017-09-19 2018-01-26 安徽大学 一种源于I型Cas系统4个cas基因的原核生物基因编辑方法
CN107557378A (zh) 2017-09-19 2018-01-09 安徽大学 一种基于I型CRISPR‑Cas系统中基因cas7‑3的真核基因编辑方法
CN107619837A (zh) 2017-09-20 2018-01-23 西北农林科技大学 利用Cas9切割核酸酶介导Ipr1定点插入获取转基因牛胎儿成纤维细胞的方法
CN107513531B (zh) 2017-09-21 2020-02-21 无锡市妇幼保健院 用于内源性过表达lncRNA-XIST的gRNA靶点序列及其应用
CN107686848A (zh) 2017-09-26 2018-02-13 中山大学孙逸仙纪念医院 转座子协同CRISPR/Cas9系统的稳定敲除单质粒载体及其应用
CN107557394A (zh) 2017-09-29 2018-01-09 南京鼓楼医院 降低CRISPR/Cas9介导的胚胎基因编辑脱靶率的方法
CN107760652A (zh) 2017-09-29 2018-03-06 华南理工大学 CRISPR/CAS9介导药物转运体靶向性敲除的caco‑2细胞模型及其方法
CN107760663A (zh) 2017-09-30 2018-03-06 新疆大学 油莎草pepc基因的克隆及表达载体的构建和应用
CN107828794A (zh) 2017-09-30 2018-03-23 上海市农业生物基因中心 一种水稻耐盐基因OsRR22突变体、其编码的氨基酸序列、植株及该突变体的创制方法
CN107630006B (zh) 2017-09-30 2020-09-11 山东兴瑞生物科技有限公司 一种制备tcr与hla双基因敲除的t细胞的方法
CN107604003A (zh) 2017-10-10 2018-01-19 南方医科大学 一种基于线性化crispr‑cas9慢病毒载体基因敲除试剂盒及其应用
CN107557381A (zh) 2017-10-12 2018-01-09 南京农业大学 一种白菜CRISPR‑Cas9基因编辑体系的建立及其应用
CN108102940B (zh) 2017-10-12 2021-07-13 中石化上海工程有限公司 一株利用CRISPR/Cas9系统敲除XKS1基因的工业酿酒酵母菌株及构建方法
CN107474129B (zh) 2017-10-12 2018-10-19 江西汉氏联合干细胞科技有限公司 特异性增强crispr-cas系统基因编辑效率的方法
CN108103586A (zh) 2017-10-13 2018-06-01 上海科技大学 一种CRISPR/Cas9随机文库及其构建和应用
CN107586779B (zh) 2017-10-14 2018-08-28 天津金匙生物科技有限公司 使用crispr-cas系统对间充质干细胞进行casp3基因敲除的方法
CN107619829B (zh) 2017-10-14 2018-08-24 南京平港生物技术有限公司 使用crispr-cas系统对间充质干细胞进行gins2基因敲除的方法
CN107523567A (zh) 2017-10-16 2017-12-29 遵义医学院 一种敲除人ezrin基因增强子的食管癌细胞株的构建方法
US11795443B2 (en) 2017-10-16 2023-10-24 The Broad Institute, Inc. Uses of adenosine base editors
CN107760715B (zh) 2017-10-17 2021-12-10 张业胜 一种转基因载体及其构建方法和应用
CN107937427A (zh) 2017-10-20 2018-04-20 广东石油化工学院 一种基于CRISPR/Cas9体系的同源修复载体构建方法
CN107893086B (zh) 2017-10-24 2021-09-03 中国科学院武汉植物园 快速构建配对sgRNA的Cas9双元表达载体文库的方法
CN107760684B (zh) 2017-11-03 2018-09-25 上海拉德钫斯生物科技有限公司 使用crispr-cas系统对间充质干细胞进行rbm17基因敲除的方法
CN107858346B (zh) 2017-11-06 2020-06-16 天津大学 一种敲除酿酒酵母染色体的方法
CN107794276A (zh) 2017-11-08 2018-03-13 中国农业科学院作物科学研究所 一种crispr介导快速有效的农作物定点基因片段或等位基因替换方法和体系
CN107630043A (zh) 2017-11-14 2018-01-26 吉林大学 采用敲除技术建立Gadd45a敲除兔模型的方法
CN108441519A (zh) 2017-11-15 2018-08-24 中国农业大学 在crispr/cas9基因编辑中提高同源修复效率的方法
CN107858373B (zh) 2017-11-16 2020-03-17 山东省千佛山医院 内皮细胞条件性敲除ccr5基因小鼠模型的构建方法
CN107893075A (zh) 2017-11-17 2018-04-10 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR‑Cas9靶向敲除人肠癌细胞RITA基因及其特异性的sgRNA
CN108192956B (zh) 2017-11-17 2021-06-01 东南大学 一种基于Cas9核酸酶的DNA检测分析方法及其应用
CN107828874B (zh) 2017-11-20 2020-10-16 东南大学 一种基于crispr的dna检测和分型方法及其应用
CN107904261A (zh) 2017-11-21 2018-04-13 福州大学 CRISPR/Cas9纳米基因系统的制备及其在转染方面的应用
CN107653256A (zh) 2017-11-21 2018-02-02 云南省烟草农业科学研究院 一种烟草多酚氧化酶基因NtPPO1及其定点突变方法与应用
CN107893076A (zh) 2017-11-23 2018-04-10 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR‑Cas9靶向敲除人乳腺癌细胞RASSF2基因及其特异性的sgRNA
CN107937501A (zh) 2017-11-24 2018-04-20 安徽师范大学 一种快速简便的筛选CRISPR/Cas基因编辑阳性对象的方法
CN107937432B (zh) 2017-11-24 2020-05-01 华中农业大学 一种基于crispr系统的基因组编辑方法及其应用
CN107828738A (zh) 2017-11-28 2018-03-23 新乡医学院 一种dna甲基转移酶缺陷型cho细胞系及其制备方法及应用
CN107988256B (zh) 2017-12-01 2020-07-28 暨南大学 人亨廷顿基因敲入用重组载体及其构建方法和在模型猪构建中的应用
CN108570479B (zh) 2017-12-06 2020-04-03 内蒙古大学 一种基于CRISPR/Cas9技术介导绒山羊VEGF基因定点敲入的方法
CN108148873A (zh) 2017-12-06 2018-06-12 南方医科大学 一种cav-1基因缺失斑马鱼及其制备方法
CN108315330B (zh) 2017-12-07 2020-05-19 嘉兴市第一医院 CRISPR-Cas9系统特异性靶向人RSPO2基因的sgRNA及敲除方法和应用
CN107974466B (zh) 2017-12-07 2020-09-29 中国科学院水生生物研究所 一种鲟鱼CRISPR/Cas9基因编辑方法
CN108148835A (zh) 2017-12-07 2018-06-12 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR-Cas9靶向敲除SLC30A1基因及其特异性的sgRNA
CN108251423B (zh) 2017-12-07 2020-11-06 嘉兴市第一医院 CRISPR-Cas9系统特异性靶向人RSPO2基因的sgRNA及激活方法和应用
CN107828826A (zh) 2017-12-12 2018-03-23 南开大学 一种体外高效获得神经干细胞的方法
CN108103098B (zh) 2017-12-14 2020-07-28 华南理工大学 一种化合物皮肤致敏体外评估细胞模型及其构建方法
US20220238182A1 (en) 2017-12-15 2022-07-28 The Broad Institute, Inc. Systems and methods for predicting repair outcomes in genetic engineering
CN107988268A (zh) 2017-12-18 2018-05-04 湖南师范大学 一种基因敲除选育tcf25基因缺失型斑马鱼的方法
CN108018316A (zh) 2017-12-20 2018-05-11 湖南师范大学 一种基因敲除选育rmnd5b基因缺失型斑马鱼的方法
CN108048466B (zh) 2017-12-21 2020-02-07 嘉兴市第一医院 CRISPR-Cas13a系统特异性靶向人RSPO2基因的crRNA及系统和应用
RU2652899C1 (ru) 2017-12-28 2018-05-03 Федеральное бюджетное учреждение науки "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора) РНК-проводники для подавления репликации вируса гепатита B и для элиминации вируса гепатита B из клетки-хозяина
CN107893080A (zh) 2017-12-29 2018-04-10 江苏省农业科学院 一种靶向大鼠Inhba基因的sgRNA及其应用
CN107988246A (zh) 2018-01-05 2018-05-04 汕头大学医学院 一种基因敲除载体及其斑马鱼胶质瘤模型
CN108103092B (zh) 2018-01-05 2021-02-12 中国农业科学院作物科学研究所 利用CRISPR-Cas系统修饰OsHPH基因获得矮化水稻的系统及其应用
CN107988229B (zh) 2018-01-05 2020-01-07 中国农业科学院作物科学研究所 一种利用CRISPR-Cas修饰OsTAC1基因获得分蘖改变的水稻的方法
CN108559760A (zh) 2018-01-09 2018-09-21 陕西师范大学 基于CRISPR靶向基因组修饰技术建立荧光素酶knock-in细胞系的方法
CN108559730B (zh) 2018-01-12 2021-09-24 中国人民解放军第四军医大学 利用CRISPR/Cas9技术构建Hutat2:Fc基因敲入单核细胞的实验方法
CN108148837A (zh) 2018-01-12 2018-06-12 南京医科大学 ApoE-CRISPR/Cas9载体及其在敲除ApoE基因中的应用
CN108251451A (zh) 2018-01-16 2018-07-06 西南大学 HTT的CRISPR/Cas9-gRNA打靶序列对、质粒及其应用
CN108251452A (zh) 2018-01-17 2018-07-06 扬州大学 一种表达Cas9基因的转基因斑马鱼及其构建方法和应用
CN108359712B (zh) 2018-02-09 2020-06-26 广东省农业科学院农业生物基因研究中心 一种快速高效筛选SgRNA靶向DNA序列的方法
CN108559745A (zh) 2018-02-10 2018-09-21 和元生物技术(上海)股份有限公司 基于CRISPR-Cas9技术提高B16F10细胞转染效率的方法
CN108359691B (zh) 2018-02-12 2021-09-28 中国科学院重庆绿色智能技术研究院 利用mito-CRISPR/Cas9系统敲除异常线粒体DNA的试剂盒及方法
CN108486145A (zh) 2018-02-12 2018-09-04 中国科学院遗传与发育生物学研究所 基于CRISPR/Cas9的植物高效同源重组方法
CN109021111B (zh) 2018-02-23 2021-12-07 上海科技大学 一种基因碱基编辑器
CN108396027A (zh) 2018-02-27 2018-08-14 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR-Cas9靶向敲除人肠癌细胞DEAF1基因及其特异性的sgRNA
CN108486159B (zh) 2018-03-01 2021-10-22 南通大学附属医院 一种敲除GRIN2D基因的CRISPR-Cas9系统及其应用
CN108410906A (zh) 2018-03-05 2018-08-17 淮海工学院 一种适用于海洋甲壳类线粒体基因组的CRISPR/Cpf1基因编辑方法
CN108342480B (zh) 2018-03-05 2022-03-01 北京医院 一种基因变异检测质控物及其制备方法
CN108410907B (zh) 2018-03-08 2021-08-27 湖南农业大学 一种基于CRISPR/Cas9技术实现HMGCR基因敲除的方法
CN108410911B (zh) 2018-03-09 2021-08-20 广西医科大学 基于CRISPR/Cas9技术构建的LMNA基因敲除的细胞系
CN108486108B (zh) 2018-03-16 2020-10-09 华南农业大学 一种敲除人hmgb1基因的细胞株及其应用
CN108486146B (zh) 2018-03-16 2021-02-19 中国农业科学院作物科学研究所 LbCpf1-RR突变体用于CRISPR/Cpf1系统在植物基因编辑中的应用
CN108384784A (zh) 2018-03-23 2018-08-10 广西医科大学 一种利用CRISPR/Cas9技术敲除Endoglin基因的方法
CN108504685A (zh) 2018-03-27 2018-09-07 宜明细胞生物科技有限公司 一种利用CRISPR/Cas9系统同源重组修复IL-2RG缺陷基因的方法
CN108410877A (zh) 2018-03-27 2018-08-17 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR-Cas9靶向敲除人细胞SANIL1基因及其特异性的sgRNA
CN108486234B (zh) 2018-03-29 2022-02-11 东南大学 一种crispr分型pcr的方法及其应用
CN108424931A (zh) 2018-03-29 2018-08-21 内蒙古大学 CRISPR/Cas9技术介导山羊VEGF基因定点整合的方法
CN108441520B (zh) 2018-04-04 2020-07-31 苏州大学 利用CRISPR/Cas9系统构建的基因条件性敲除方法
CN108486111A (zh) 2018-04-04 2018-09-04 山西医科大学 CRISPR-Cas9靶向敲除人SMYD3基因的方法及其特异性sgRNA
CN108504693A (zh) 2018-04-04 2018-09-07 首都医科大学附属北京朝阳医院 利用Crispr技术敲除T合酶基因构建的O-型糖基化异常的结肠癌细胞系
CN108486154A (zh) 2018-04-04 2018-09-04 福州大学 一种唾液酸酶基因敲除小鼠模型的构建方法及其应用
CN108753772B (zh) 2018-04-04 2020-10-30 南华大学 基于CRISPR/Cas技术敲除CAPNS1基因的人神经母细胞瘤细胞系的构建方法
CN108504657B (zh) 2018-04-12 2019-06-14 中南民族大学 利用crispr-cas9技术敲除hek293t细胞kdm2a基因的方法
CN108588182A (zh) 2018-04-13 2018-09-28 中国科学院深圳先进技术研究院 基于crispr-链取代的等温扩增及检测技术
CN108753817A (zh) 2018-04-13 2018-11-06 北京华伟康信生物科技有限公司 增强细胞的抗癌能力的方法及采用该方法获得的增强型细胞
CN108823248A (zh) 2018-04-20 2018-11-16 中山大学 一种利用CRISPR/Cas9编辑陆川猪CD163基因的方法
CN108753832A (zh) 2018-04-20 2018-11-06 中山大学 一种利用CRISPR/Cas9编辑大白猪CD163基因的方法
CN108588071A (zh) 2018-04-25 2018-09-28 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR-Cas9靶向敲除人肠癌细胞CNR1基因及其特异性的sgRNA
CN108707621B (zh) 2018-04-26 2021-02-12 中国农业科学院作物科学研究所 一种CRISPR/Cpf1系统介导的以RNA转录本为修复模板的同源重组方法
CN108546712B (zh) 2018-04-26 2020-08-07 中国农业科学院作物科学研究所 一种利用CRISPR/LbCpf1系统实现目的基因在植物中同源重组的方法
CN108588128A (zh) 2018-04-26 2018-09-28 南昌大学 一种高效率大豆CRISPR/Cas9系统的构建方法及应用
CN108642053A (zh) 2018-04-28 2018-10-12 和元生物技术(上海)股份有限公司 CRISPR-Cas9靶向敲除人肠癌细胞PPP1R1C基因及其特异性的sgRNA
CN108611364A (zh) 2018-05-03 2018-10-02 南京农业大学 一种非转基因crispr突变体的制备方法
CN108588123A (zh) 2018-05-07 2018-09-28 南京医科大学 CRISPR/Cas9载体组合在制备基因敲除猪的血液制品中的应用
CN108610399B (zh) 2018-05-14 2019-09-27 河北万玛生物医药有限公司 特异性增强crispr-cas系统在表皮干细胞中进行基因编辑效率的方法
CN108546717A (zh) 2018-05-15 2018-09-18 吉林大学 反义lncRNA介导顺式调控抑制靶基因表达的方法
CN108624622A (zh) 2018-05-16 2018-10-09 湖南艾佳生物科技股份有限公司 一种基于CRISPR-Cas9系统构建的能分泌小鼠白细胞介素-6的基因工程细胞株
CN108546718B (zh) 2018-05-16 2021-07-09 康春生 crRNA介导的CRISPR/Cas13a基因编辑系统在肿瘤细胞中的应用
CN108642055B (zh) 2018-05-17 2021-12-03 吉林大学 能有效编辑猪miR-17-92基因簇的sgRNA
CN108642077A (zh) 2018-05-18 2018-10-12 江苏省农业科学院 基于CRISPR/Cas9基因编辑技术选育绿豆不育突变体的方法及专用gRNA
CN108642090A (zh) 2018-05-18 2018-10-12 中国人民解放军总医院 基于CRISPR/Cas9技术获得Nogo-B敲除模式小鼠的方法及应用
CN108642078A (zh) 2018-05-18 2018-10-12 江苏省农业科学院 基于CRISPR/Cas9基因编辑技术选育绿豆开花传粉突变体的方法及专用gRNA
CN108559732A (zh) 2018-05-21 2018-09-21 陕西师范大学 基于CRISPR/Cas9靶向基因组修饰技术建立KI-T2A-luciferase细胞系的方法
CN108707620A (zh) 2018-05-22 2018-10-26 西北农林科技大学 一种Gene drive载体及构建方法
US20210198330A1 (en) 2018-05-23 2021-07-01 The Broad Institute, Inc. Base editors and uses thereof
CN108690844B (zh) 2018-05-25 2021-10-15 西南大学 HTT的CRISPR/Cas9-gRNA打靶序列对、质粒及HD细胞模型
CN108707628B (zh) 2018-05-28 2021-11-23 上海海洋大学 斑马鱼notch2基因突变体的制备方法
CN108823249A (zh) 2018-05-28 2018-11-16 上海海洋大学 CRISPR/Cas9构建notch1a突变体斑马鱼的方法
CN108707629A (zh) 2018-05-28 2018-10-26 上海海洋大学 斑马鱼notch1b基因突变体的制备方法
CN108707604B (zh) 2018-05-30 2019-07-23 江西汉氏联合干细胞科技有限公司 表皮干细胞中采用CRISPR-Cas系统进行CNE10基因敲除
CN108753835A (zh) 2018-05-30 2018-11-06 中山大学 一种利用CRISPR/Cas9编辑猪BMP15基因的方法
CN108753836B (zh) 2018-06-04 2021-10-12 北京大学 一种利用rna干扰机制的基因调控或编辑系统
CN108715850B (zh) 2018-06-05 2020-10-23 艾一生命科技(广东)有限公司 表皮干细胞中采用CRISPR-Cas系统进行GING2基因敲除
CN108753813B (zh) 2018-06-08 2021-08-24 中国水稻研究所 获得无标记转基因植物的方法
CN108753783A (zh) 2018-06-13 2018-11-06 上海市同济医院 Sqstm1全基因敲除小鼠动物模型的构建方法和应用
CN108728486A (zh) 2018-06-20 2018-11-02 江苏省农业科学院 一种茄子CRISPR/Cas9基因敲除载体的构建方法和应用
CN108841845A (zh) 2018-06-21 2018-11-20 广东石油化工学院 一种带有筛选标记的CRISPR/Cas9载体及其构建方法
CN108893529A (zh) 2018-06-25 2018-11-27 武汉博杰生物医学科技有限公司 一种基于CRISPR技术特异性检测人KRAS基因2号及3号外显子突变的crRNA
CN108866093B (zh) 2018-07-04 2021-07-09 广东三杰牧草生物科技有限公司 一种利用CRISPR/Cas9系统对紫花苜蓿基因定点突变的方法
CN108913714A (zh) 2018-07-05 2018-11-30 江西省超级水稻研究发展中心 一种利用CRISPR/Cas9系统敲除BADH2基因创制香稻的方法
CN108795902A (zh) 2018-07-05 2018-11-13 深圳三智医学科技有限公司 一种安全高效的CRISPR/Cas9基因编辑技术
EP3820495A4 (en) 2018-07-09 2022-07-20 The Broad Institute Inc. RNA PROGRAMMABLE EPIGENETIC RNA MODIFIERS AND THEIR USES
CN108913691B (zh) 2018-07-16 2020-09-01 山东华御生物科技有限公司 表皮干细胞中采用CRISPR-Cas系统进行Card3基因敲除
CN108913664B (zh) 2018-07-20 2020-09-04 嘉兴学院 一种CRISPR/Cas9基因编辑方法敲除卵巢癌细胞中CFP1基因的方法
CN108823291B (zh) 2018-07-25 2022-04-12 领航医学科技(深圳)有限公司 基于crispr技术的特异性核酸片段定量检测方法
CN108853133A (zh) 2018-07-25 2018-11-23 福州大学 一种PAMAM与CRISPR/Cas9系统重组质粒递送纳米粒的制备方法
CN108913717A (zh) 2018-08-01 2018-11-30 河南农业大学 一种利用CRISPR/Cas9系统对水稻PHYB基因定点突变的方法
WO2020041751A1 (en) 2018-08-23 2020-02-27 The Broad Institute, Inc. Cas9 variants having non-canonical pam specificities and uses thereof

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