CN103981211B - 一种创制闭颖授粉水稻材料的育种方法 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及一种创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,包含以下步骤:在水稻闭颖授粉决定基因DEP2外显子区选取靶标片段并构建植物CRISPR/Cas9打靶重组载体,导入水稻细胞并再生成苗,通过剪切造成水稻细胞DEP2基因出现功能缺失突变,在通过对再生株系基因组目标片段的测序,获取携带两个等位DEP2基因同时发生功能缺失突变的株系,经过表型鉴定,确认再生植株开花授粉由开颖转为闭颖。实验表明,本方法可快速获得闭颖授粉水稻材料。

Description

一种创制闭颖授粉水稻材料的育种方法
技术领域
本发明属于水稻生物技术育种领域,具体涉及一种快速创制闭颖授粉水稻材料的选育方法。
背景技术
基因漂移(或基因逃逸,Geneflow),是指一种生物的目标基因向附近野生近缘种自发转移,导致附近野生近缘种发生内在变化,具有目标基因的一些优势特征,形成新物种,以致整个生态环境发生结构性的变化。根据转基因漂移对象的不同,可以分为转基因作物的外源基因向其非转基因作物、野生近缘种和同一物种的杂草类型逃逸。基因漂移的途径主要包括花粉漂移、种子传播(或扩散)和无性繁殖器官的移动等。基因漂移一般需要一定的媒介,如风、昆虫、动物和水等,其中风媒和虫媒传粉是最为有效的方式,而花粉也可以产生长距离的漂移
闭花受精(cleistogamy)是在花朵未开放时成熟花粉粒在花粉囊内萌发,花粉管穿出花粉囊,伸向柱头,进入子房,把精子送入胚囊,完成受精。被子植物(60个科约300种植物)中广泛存在着闭花受精现象。栽培作物中,大豆、豌豆属于严格的闭花受精作物,水稻、大麦、棉花、高梁中也存在闭花受精类型。闭花受精能使植物避免外来花粉干扰而保持纯种,也可以防止自身花粉向外漂移。因此,闭花受精可作为控制基因漂流的途径之一。
水稻是典型的开花授精(开颖授粉)的作物。但目前有一些研究分离了部分表现为闭颖性状的水稻突变体,如:单个隐性基因d7决定CL突变体的表型(不正常的护颖,使外颖和内颖结合在一起);单个隐性基因ld(t)[lodiculelessspikelet(t)]突变产生浆片缺失突变体,颖壳不张开;水稻直立穗基因DEP2突变能产生严格的闭颖授粉性状。
虽然闭颖材料品种在水稻转基因育种方面具有广阔的应用前景,但是天然的遗传突变资源有限,应用存在一定的技术难度。通过传统的回交导入技术,育种周期漫长,成本较大,且可能导入与突变位点连锁的其他供体基因组片段,对品种选育带来不可预知的风险。因此,人们希望获得一种能够快速定向创制闭颖授粉水稻材料的方法。
发明内容
针对上述问题,本发明提供了一种创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:
步骤1,在水稻闭颖授粉决定基因DEP2的第一、第二或第三外显子区选取靶标片段;
其中,所述靶标片段的双链结构中的一条链具有NGG结构,其中N代表碱基A、T、G、C中的任意一种;
步骤2,按照靶标序列的核苷酸排列顺序,构建用于水稻DEP2基因打靶的CRISPR/Cas9重组载体,所述重组载体包含向导RNA表达框和Cas9核酸酶表达框,所述向导RNA表达框包含所述靶标片段;
步骤3,将所述重组载体导入水稻细胞,使所述向导RNA表达框和所述Cas9核酸酶表达框在水稻细胞中共同表达,剪切DEP2基因的双链的所述靶标片段,诱发所述水稻细胞自身的DNA修复功能,在靶标位点随机插入或缺失碱基,实现细胞内DEP2基因的功能缺失突变;
步骤4,用导入所述重组载体的水稻细胞再生植株;
步骤5,对所述再生植株中DEP2基因包含靶标片段的DNA区段进行测序;
步骤6,选择两个等位DEP2基因都出现功能缺失突变的再生植株,进行表型鉴定,观察所述再生植株的开花习性,挑取完全闭颖授粉的植株,作为所创制的闭颖授粉水稻材料。
优选地,所述靶标片段的双链结构中的一条链具有5’-(N)X-NGG-3’结构,其中,(N)X表示数目为X的一条碱基序列{N1,N2……Nx},N1,N2……Nx中的每一个表示A、G、C、T中的任意一个,NGG中的N也代表A、G、C、T中的任意一个。X一般为19或20。
优选地,所述重组载体包含向导RNA表达框,其能够在水稻细胞内表达并且核苷酸序列如SeqIDNo.1所示,并且所述重组载体包含Cas9核酸酶表达框,其能够在水稻细胞内表达并且核苷酸序列如SeqIDNo.2所示。也可以说,另一方面本发明还提供了这种重组载体。
优选地,所述向导RNA表达框包括:水稻U6启动子,其核苷酸序列如SeqIDNo.1第1至246位所示;结构特征为(N)X的靶标序列和人工合成的sgRNA骨架序列,其核苷酸序列如SeqIDNo.1第266至349位所示;和Poly-T终止子,其核苷酸序列如SeqIDNo.1第350至357位所示,
所述Cas9核酸酶表达框包括:玉米ZmUBI启动子,其核苷酸序列如SeqIDNo.2第1至2031位所示;植物偏好密码子改造后的Cas9编码序列,其核苷酸序列如SeqIDNo.2第2034至6305位所示;以及tNOS终止子,其核苷酸序列如SeqIDNo.2第6347至6599位所示。
优选地,所述向导RNA表达框包括CRISPRRNA(crRNA)序列,其具有所述靶标片段的5’-(N)X-NGG-3’中的(N)X或与之互补的序列。
在所选的DEP2基因外显子上,具有所述(N)X-NGG-3’结构的片段可选为靶标的共有35个。
步骤6中所提到功能缺失突变指的是正常DEP2编码序列在靶标位点出现终止子或阅读框移位。
所述Cas9核酸酶表达框位于包含所述向导RNA表达框的同一载体中。
在步骤3中将所获重组载体导入水稻细胞,从而使细胞同时含有步骤所述靶标片段的向导RNA,Cas9核酸酶。在向导RNA和Cas9核酸酶的共同作用下,DEP2基因的双链靶标片段被剪切,再通过水稻细胞自身的DNA修复功能,最终实现细胞内DEP2基因靶标片段的随机插入和/或随机缺失。
所述方法中,将重组载体导入水稻细胞的方法为农杆菌介导的水稻愈伤组织稳定转化。由于在将所获重组载体导入水稻细胞的过程中,是采用农杆菌介导的方法,重组载体被导入到水稻的遗传DNA中,所以在进行剪切时使得水稻的遗传DNA的片段受到剪切。
在本发明中,所述再生植物的方法为细胞或组织经过组织培养,获得植株。
在步骤5中,可以通过基因组PCR方法克隆再生植株中DEP2基因包含靶标片段的DNA区段,并对扩增产物测序。所述基因组PCR方法为,针对包含靶标片段的基因组区域,设计位点特异性引物,以再生植株的基因组DNA为模板,扩增所述包含靶标片段的基因组区域。所述扩增产物测序是指,对PCR产物中的目的条带测序。
所述两个等位DEP2基因都出现功能缺失突变是指测序结果在DEP2基因靶标位点出现两种功能缺失突变序列,且没有出现野生型序列;
其中所述功能缺失突变序列指的是正常DEP2编码序列在靶标位点出现终止子或阅读框移位。
向导RNA表达框的核苷酸序列(SeqIDNo.1)如下所示:
ggatcatgaaccaacggcctggctgtatttggtggttgtgtagggagatggggagaagaaaagcccgattctcttcgctgtgatgggctggatgcatgcgggggagcgggaggcccaagtacgtgcacggtgagcggcccacagggcgagtgtgagcgcgagaggcgggaggaacagtttagtaccacattgcccagctaactcgaacgcgaccaacttataaacccgcgcgctgtcgcttgtgtgGCTCTCCCCGCGCCGCTCGgttttagagctatgctgaaaagcatagcaagttaaaataaggctagtccgttatcaacttgaaaaagtggcaccgagtcggtgctttttttt
Cas9核酸酶表达框的核苷酸序列(SeqIDNo.2)如下所示:
ctgcagtgcagcgtgacccggtcgtgcccctctctagagataatgagcattgcatgtctaagttataaaaaattaccacatattttttttgtcacacttgtttgaagtgcagtttatctatctttatacatatatttaaactttactctacgaataatataatctatagtactacaataatatcagtgttttagagaatcatataaatgaacagttagacatggtctaaaggacaattgagtattttgacaacaggactctacagttttatctttttagtgtgcatgtgttctcctttttttttgcaaatagcttcacctatataatacttcatccattttattagtacatccatttagggtttagggttaatggtttttatagactaatttttttagtacatctattttattctattttagcctctaaattaagaaaactaaaactctattttagtttttttatttaataatttagatataaaatagaataaaataaagtgactaaaaattaaacaaataccctttaagaaattaaaaaaactaaggaaacatttttcttgtttcgagtagataatgccagcctgttaaacgccgtcgacgagtctaacggacaccaaccagcgaaccagcagcgtcgcgtcgggccaagcgaagcagacggcacggcatctctgtcgctgcctctggacccctctcgagagttccgctccaccgttggacttgctccgctgtcggcatccagaaatgcgtggcggagcggcagacgtgagccggcacggcaggcggcctcctcctcctctcacggcacggcagctacgggggattcctttcccaccgctccttcgctttcccttcctcgcccgccgtaataaatagacaccccctccacaccctctttccccaacctcgtgttgttcggagcgcacacacacacaaccagatctcccccaaatccacccgtcggcacctccgcttcaaggtacgccgctcgtcctccccccccccccctctctaccttctctagatcggcgttccggtccatggttagggcccggtagttctacttctgttcatgtttgtgttagatccgtgtttgtgttagatccgtgctgctagcgttcgtacacggatgcgacctgtacgtcagacacgttctgattgctaacttgccagtgtttctctttggggaatcctgggatggctctagccgttccgcagacgggatcgatttcatgattttttttgtttcgttgcatagggtttggtttgcccttttcctttatttcaatatatgccgtgcacttgtttgtcgggtcatcttttcatgcttttttttgtcttggttgtgatgatgtggtctggttgggcggtcgttctagatcggagtagaattctgtttcaaactacctggtggatttattaattttggatctgtatgtgtgtgccatacatattcatagttacgaattgaagatgatggatggaaatatcgatctaggataggtatacatgttgatgcgggttttactgatgcatatacagagatgctttttgttcgcttggttgtgatgatgtggtgtggttgggcggtcgttcattcgttctagatcggagtagaatactgtttcaaactacctggtgtatttattaattttggaactgtatgtgtgtgtcatacatcttcatagttacgagtttaagatggatggaaatatcgatctaggataggtatacatgttgatgtgggttttactgatgcatatacatgatggcatatgcagcatctattcatatgctctaaccttgagtacctatctattataataaacaagtatgttttataattattttgatcttgatatacttggatgatggcatatgcagcagctatatgtggatttttttagccctgccttcatacgctatttatttgcttggtactgtttcttttgtcgatgctcaccctgttgtttggtgttacttctgcagcccgggggatccccaatacttgtatggccgcggccgctctagatggattacaaggaccacgacggggattacaaggaccacgacattgattacaaggatgatgatgacaagatggctccgaagaagaagaggaaggttggcatccacggggtgccagctgctgacaagaagtactcgatcggcctcgatattgggactaactctgttggctgggccgtgatcaccgacgagtacaaggtgccctcaaagaagttcaaggtcctgggcaacaccgatcggcattccatcaagaagaatctcattggcgctctcctgttcgacagcggcgagacggctgaggctacgcggctcaagcgcaccgcccgcaggcggtacacgcgcaggaagaatcgcatctgctacctgcaggagattttctccaacgagatggcgaaggttgacgattctttcttccacaggctggaggagtcattcctcgtggaggaggataagaagcacgagcggcatccaatcttcggcaacattgtcgacgaggttgcctaccacgagaagtaccctacgatctaccatctgcggaagaagctcgtggactccacagataaggcggacctccgcctgatctacctcgctctggcccacatgattaagttcaggggccatttcctgatcgagggggatctcaacccggacaatagcgatgttgacaagctgttcatccagctcgtgcagacgtacaaccagctcttcgaggagaaccccattaatgcgtcaggcgtcgacgcgaaggctatcctgtccgctaggctctcgaagtctcggcgcctcgagaacctgatcgcccagctgccgggcgagaagaagaacggcctgttcgggaatctcattgcgctcagcctggggctcacgcccaacttcaagtcgaatttcgatctcgctgaggacgccaagctgcagctctccaaggacacatacgacgatgacctggataacctcctggcccagatcggcgatcagtacgcggacctgttcctcgctgccaagaatctgtcggacgccatcctcctgtctgatattctcagggtgaacaccgagattacgaaggctccgctctcagcctccatgatcaagcgctacgacgagcaccatcaggatctgaccctcctgaaggcgctggtcaggcagcagctccccgagaagtacaaggagatcttcttcgatcagtcgaagaacggctacgctgggtacattgacggcggggcctctcaggaggagttctacaagttcatcaagccgattctggagaagatggacggcacggaggagctgctggtgaagctcaatcgcgaggacctcctgaggaagcagcggacattcgataacggcagcatcccacaccagattcatctcggggagctgcacgctatcctgaggaggcaggaggacttctaccctttcctcaaggataaccgcgagaagatcgagaagattctgactttcaggatcccgtactacgtcggcccactcgctaggggcaactcccgcttcgcttggatgacccgcaagtcagaggagacgatcacgccgtggaacttcgaggaggtggtcgacaagggcgctagcgctcagtcgttcatcgagaggatgacgaatttcgacaagaacctgccaaatgagaaggtgctccctaagcactcgctcctgtacgagtacttcacagtctacaacgagctgactaaggtgaagtatgtgaccgagggcatgaggaagccggctttcctgtctggggagcagaagaaggccatcgtggacctcctgttcaagaccaaccggaaggtcacggttaagcagctcaaggaggactacttcaagaagattgagtgcttcgattcggtcgagatctctggcgttgaggaccgcttcaacgcctccctggggacctaccacgatctcctgaagatcattaaggataaggacttcctggacaacgaggagaatgaggatatcctcgaggacattgtgctgacactcactctgttcgaggaccgggagatgatcgaggagcgcctgaagacttacgcccatctcttcgatgacaaggtcatgaagcagctcaagaggaggaggtacaccggctgggggaggctgagcaggaagctcatcaacggcattcgggacaagcagtccgggaagacgatcctcgacttcctgaagagcgatggcttcgcgaaccgcaatttcatgcagctgattcacgatgacagcctcacattcaaggaggatatccagaaggctcaggtgagcggccagggggactcgctgcacgagcatatcgcgaacctcgctggctcgccagctatcaagaaggggattctgcagaccgtgaaggttgtggacgagctggtgaaggtcatgggcaggcacaagcctgagaacatcgtcattgagatggcccgggagaatcagaccacgcagaagggccagaagaactcacgcgagaggatgaagaggatcgaggagggcattaaggagctggggtcccagatcctcaaggagcacccggtggagaacacgcagctgcagaatgagaagctctacctgtactacctccagaatggccgcgatatgtatgtggaccaggagctggatattaacaggctcagcgattacgacgtcgatcatatcgttccacagtcattcctgaaggatgactccattgacaacaaggtcctcaccaggtcggacaagaaccggggcaagtctgataatgttccttcagaggaggtcgttaagaagatgaagaactactggcgccagctcctgaatgccaagctgatcacgcagcggaagttcgataacctcacaaaggctgagaggggcgggctctctgagctggacaaggcgggcttcatcaagaggcagctggtcgagacacggcagatcactaagcacgttgcgcagattctcgactcacggatgaacactaagtacgatgagaatgacaagctgatc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采用本发明的育种方法,能够快速创制出闭颖授粉的水稻品种,时间短,效果明显。
具体而言,相对于传统育种方法,本方法有以下优点
①,育种周期短,整个材料定向创制过程可在7个月内完成,而传统杂交-回交方法至少需要3~5年时间。
②,只改变了受体品种的一个基因,所获材料除变为闭颖授粉之外其他农艺性状不变,而传统回交方法会导入与DEP2连锁的其他基因,可能影响受体品种的农艺性状。
附图说明
图1为农杆菌介导的水稻DEP2基因CRISPR/Cas9载体转基因株系中对水稻DEP2基因定点突变测序检测的部分结果图,其中WT表示为野生型基因,“-”表示发生了删除突变的序列,“+”表示发生了插入突变的序列,“-/+”后边的数字表示删除或插入的核苷酸数量,第一行阴影部分表示目标靶位;
图2为所创制闭颖授粉水稻品种H02材料开花时的表型,左侧为供体材料H02,即用于闭颖授粉性状改良的品种,右侧为供体品种H02经定向改良后具有闭颖授粉性状的材料。
具体实施方式
下述实施例中所使用的试验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所使用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
下面描述本发明的一个实施例中所采用的育种方法
一、用于水稻DEP2基因打靶的重组载体的制备。
1.1,选择水稻DEP2基因(LOC_Os07g42410)中第一外显子中自翻译起始密码子ATG后第39-60位的核苷酸序列GCTCTCCCCGCGCCGCTCGCGG,(下划线部分为5’-(N)X-NGG-3’结构中NGG部分),作为打靶位点。
1.2,按所选择靶位点合成(华大基因公司)正向寡核苷酸链(DEP2KO1P1)和可与之互补的反向寡核苷酸链(DEP2KO1P2),
具体序列为:
DEP2KO1EP1:TGTGGCTCTCCCCGCGCCGCTCG
DEP2KO1EP2:AAACCGAGCGGCGCGGGGAGAGC
其中未被下划线标注的部分为上述靶位点中去除NGG的序列或互补序列,下划线部分为用于连接载体的粘性末端。
1.3,经过退火程序,将DEP2KO1P1和DEP2KO1P2两链退火形成具有粘性末端的双链DNA,作为构建重组载体的插入片段。
1.4,用BsaI内切酶(NEB公司)在37℃酶切包含能够在水稻细胞内表达的向导RNA表达框(核苷酸序列如SeqIDNo.1所示)和能够在水稻细胞内表达的Cas9核酸酶表达框的水稻CRISPR/Cas9基因工程载体(核苷酸序列如SeqIDNo.2所示),载体结构和构建方法按现有文献(Xuetal,GenetargetingusingtheAgrobacteriumtumefaciens-mediatedCRISPR-Cassysteminrice,RICE,2014)所示,使用BsaI内切酶酶切水稻CRISPR/Cas9基因工程载体2小时,65℃失活酶切体系10分钟,作为构建重组载体的骨架片段。
1.5,用T4连接酶(NEB公司)将重组载体骨架片段和插入片段相连,转入大肠杆菌中。经测序验证后,提取阳性转化子,构成用于水稻DEP2基因CRISPR/Cas9打靶的重组载体质粒。
农杆菌稳定转基因介导的水稻DEP2基因打靶和闭颖水稻材料的获得。
2.1,利用冻融法将上面获得的所述用于水稻DEP2基因CRISPR/Cas9打靶的重组载体质粒转入根癌农杆菌(Agrobacteriumtumefaciens)EHA105(安徽省农业科学院农业部转基因生物产品成分监督检验测试中心水稻组保存),获得阳性克隆。
2.2、取粳稻品种H02成熟种子去掉颖壳后,用70%酒精浸泡种子1min,倒掉酒精。用含有1滴Tween20的50%次氯酸钠(原液有效氯浓度大于4%)溶液浸泡种子40min(150r/min)。倒掉次氯酸钠,无菌水洗5遍至溶液澄清,无次氯酸钠味道。无菌水浸泡种子过夜。用解剖刀沿种子的糊粉层将胚剥下,将胚接种于愈伤诱导培养基上。30℃下暗培养11天后将愈伤与胚乳及胚芽分离,将去芽的状态良好、分裂旺盛的初级愈伤组织进行预培养3~5天后用于农杆菌转化。
2.3、采用上述转入了重组表达载体的根癌农杆菌进行农杆菌介导的遗传转化,该遗传转化、转化子筛选及转基因植株再生等参照YongboDuan(YongboDuan,ChenguangZhai,etal.Anefficientandhigh-throughputprotocolforAgrobacteriummediatedtransformationbasedonphosphomannoseisomerasepositiveselectioninJaponicarice(OryzasativaL.)[J].PlantCellReport,2012.DOI10.1007/s00299-012-1275-3.)等提出的方法。共获得54株转基因植株。
2.4,利用植物基因组小量提取试剂盒(天根生化公司),提取所获54株含有所述水稻DEP2基因CRISPR/Cas9打靶的重组载体的转基因水稻植株的基因组DNA。以该DNA为模板,用Phusion高保真DNA聚合酶(NEB公司)PCR扩增包含靶标区域的序列,其中PCR扩增所用的引物为:
DEP2KO1genomecheckFP:TTGGGGTTCTTGGTGAGGGGAT
DEP2KO1genomecheckRP:GCGATTCGACTCAATTCAAGTG
2.5,以DEP2KO1genomecheckFP为引物对所获PCR扩增片段直接测序,分析靶标位点的突变。测序结果表明,在所测54株植株中,46带有DEP2基因靶标序列上的突变,突变效率为85.2%;突变的形式包括碱基的插入和/或缺失。部分结果如图1所示(图中阴影部分,即第7位开始的GCTCTCCCCGCGCCG--CTCG为打靶的目标位);其中两个等位DEP2基因都出现功能缺失突变的再生株系为11株,同时出现等位基因效率为20.4%。
2.6,观察具有两个等位DEP2基因都出现功能缺失突变的再生株系的开花习性,其中9株水稻的花明显表现为闭颖授粉,表明所述9株具有两个等位DEP2基因都出现功能缺失突变的转基因株系为所定向创制闭颖授粉水稻材料。
相对于传统育种方法,本方法有以下优点
①,育种周期短,整个材料定向创制过程可在7个月内完成,而传统杂交-回交方法至少需要3~5年时间。
②,只改变了受体品种的一个基因,所获材料除变为闭颖授粉外其他农艺性状不变,而传统回交方法会导入与DEP2连锁的其他基因,可能影响受体品种的农艺性状。

Claims (5)

1.一种创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:
步骤1,在水稻闭颖授粉决定基因DEP2外显子区选取靶标片段;
其中,所述靶标片段的双链结构中的一条链具有NGG结构,其中N代表碱基A、T、G、C中的任意一种;
步骤2,按照靶标序列的核苷酸排列顺序,构建用于水稻DEP2基因打靶的CRISPR/Cas9重组载体,所述重组载体包含向导RNA表达框和Cas9核酸酶表达框,所述向导RNA表达框包含所述靶标片段;
步骤3,将所述重组载体导入水稻细胞,使所述向导RNA表达框和所述Cas9核酸酶表达框在水稻细胞中共同表达,剪切DEP2基因的双链的所述靶标片段,诱发所述水稻细胞自身的DNA修复功能,在靶标位点随机插入或缺失碱基,实现细胞内DEP2基因的功能缺失突变;
步骤4,用导入所述重组载体的水稻细胞再生植株;
步骤5,对所述再生植株中DEP2基因包含靶标片段的DNA区段进行测序;
步骤6,选择两个等位DEP2基因都出现功能缺失突变的再生植株,进行表型鉴定,观察所述再生植株的开花习性,挑取完全闭颖授粉的植株,作为所创制的闭颖授粉水稻材料,
其中,所述向导RNA表达框能够在水稻细胞内表达并且核苷酸序列如SeqIDNo.1所示;所述Cas9核酸酶表达框能够在水稻细胞内表达并且核苷酸序列如SeqIDNo.2所示。
2.根据权利要求1所述的创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,其特征在于,所述靶标片段的双链结构中的一条链具有5’-(N)X-NGG-3’结构,其中,(N)X表示数目为X的一条碱基序列{N1,N2……Nx},N1,N2……Nx中的每一个表示A、G、C、T中的任意一个。
3.根据权利要求2所述的创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,其特征在于,所述向导RNA表达框包括:水稻U6启动子,其核苷酸序列如SeqIDNo.1第1至246位所示;结构特征为(N)X的靶标序列和人工合成的sgRNA骨架序列,其核苷酸序列如SeqIDNo.1第266至349位所示;和Poly-T终止子,其核苷酸序列如SeqIDNo.1第350至357位所示,
所述Cas9核酸酶表达框包括:玉米ZmUBI启动子,其核苷酸序列如SeqIDNo.2第1至2031位所示;植物偏好密码子改造后的Cas9编码序列,其核苷酸序列如SeqIDNo.2第2034至6305位所示;以及tNOS终止子,其核苷酸序列如SeqIDNo.2第6347至6599位所示。
4.根据权利要求1所述的创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,其特征在于,
所述向导RNA表达框包括CRISPRRNA序列,其具有所述靶标片段的5’-(N)X-NGG-3’中的(N)X或与之互补的序列。
5.根据权利要求1所述的创制闭颖授粉水稻材料的育种方法,其特征在于,所述靶标片段位于水稻闭颖授粉决定基因DEP2的第一、第二和/或第三外显子上。
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3613852A3 (en) 2011-07-22 2020-04-22 President and Fellows of Harvard College Evaluation and improvement of nuclease cleavage specificity
US9163284B2 (en) 2013-08-09 2015-10-20 President And Fellows Of Harvard College Methods for identifying a target site of a Cas9 nuclease
US9359599B2 (en) 2013-08-22 2016-06-07 President And Fellows Of Harvard College Engineered transcription activator-like effector (TALE) domains and uses thereof
US9322037B2 (en) 2013-09-06 2016-04-26 President And Fellows Of Harvard College Cas9-FokI fusion proteins and uses thereof
US9228207B2 (en) 2013-09-06 2016-01-05 President And Fellows Of Harvard College Switchable gRNAs comprising aptamers
US9737604B2 (en) 2013-09-06 2017-08-22 President And Fellows Of Harvard College Use of cationic lipids to deliver CAS9
US20150166982A1 (en) 2013-12-12 2015-06-18 President And Fellows Of Harvard College Methods for correcting pi3k point mutations
US10077453B2 (en) 2014-07-30 2018-09-18 President And Fellows Of Harvard College CAS9 proteins including ligand-dependent inteins
CN104651392B (zh) * 2015-01-06 2018-07-31 华南农业大学 一种利用CRISPR/Cas9系统定点突变P/TMS12-1获得温敏不育系的方法
IL294014B1 (en) 2015-10-23 2024-03-01 Harvard College Nucleobase editors and their uses
AU2017306676B2 (en) 2016-08-03 2024-02-22 President And Fellows Of Harvard College Adenosine nucleobase editors and uses thereof
CA3033327A1 (en) 2016-08-09 2018-02-15 President And Fellows Of Harvard College Programmable cas9-recombinase fusion proteins and uses thereof
WO2018039438A1 (en) 2016-08-24 2018-03-01 President And Fellows Of Harvard College Incorporation of unnatural amino acids into proteins using base editing
CN110214180A (zh) 2016-10-14 2019-09-06 哈佛大学的校长及成员们 核碱基编辑器的aav递送
WO2018119359A1 (en) 2016-12-23 2018-06-28 President And Fellows Of Harvard College Editing of ccr5 receptor gene to protect against hiv infection
CN106834341B (zh) * 2016-12-30 2020-06-16 中国农业大学 一种基因定点突变载体及其构建方法和应用
US11898179B2 (en) 2017-03-09 2024-02-13 President And Fellows Of Harvard College Suppression of pain by gene editing
JP2020510439A (ja) 2017-03-10 2020-04-09 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ シトシンからグアニンへの塩基編集因子
KR20190130613A (ko) 2017-03-23 2019-11-22 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 핵산 프로그램가능한 dna 결합 단백질을 포함하는 핵염기 편집제
WO2018209320A1 (en) 2017-05-12 2018-11-15 President And Fellows Of Harvard College Aptazyme-embedded guide rnas for use with crispr-cas9 in genome editing and transcriptional activation
CN109082436A (zh) * 2017-06-13 2018-12-25 未名生物农业集团有限公司 利用bcs1l基因和向导rna/cas核酸内切酶体系改良植物农艺性状的方法
WO2019023680A1 (en) 2017-07-28 2019-01-31 President And Fellows Of Harvard College METHODS AND COMPOSITIONS FOR EVOLUTION OF BASIC EDITORS USING PHAGE-ASSISTED CONTINUOUS EVOLUTION (PACE)
US11319532B2 (en) 2017-08-30 2022-05-03 President And Fellows Of Harvard College High efficiency base editors comprising Gam
US11795443B2 (en) 2017-10-16 2023-10-24 The Broad Institute, Inc. Uses of adenosine base editors
WO2019084306A1 (en) * 2017-10-26 2019-05-02 University Of Florida Research Foundation, Inc. METHOD FOR REDUCING GENOMIC COMPLEXITY AND DETECTING POLYMORPHISMS
CN108949774B (zh) * 2018-07-04 2021-05-04 广东三杰牧草生物科技有限公司 一种利用MsPALM1 人工定点突变体获得多叶型紫花苜蓿材料的方法
EP3942040A1 (en) 2019-03-19 2022-01-26 The Broad Institute, Inc. Methods and compositions for editing nucleotide sequences
MX2022014008A (es) 2020-05-08 2023-02-09 Broad Inst Inc Métodos y composiciones para la edición simultánea de ambas cadenas de una secuencia de nucleótidos de doble cadena objetivo.

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102273400A (zh) * 2011-06-22 2011-12-14 安徽省农业科学院水稻研究所 一种利用闭颖基因抑制转基因水稻花粉漂移的方法

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