JP7149599B2 - 操作された転写活性化因子様エフェクター(tale)ドメインおよびその使用 - Google Patents
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Description
本出願は、35 U.S.C. § 365(c)の下で、2014年6月30日に出願されたU.S.S.N. 14/320,519の優先権を主張し、また、35 U.S.C. § 119(e)の下で、2013年8月22日に出願された米国仮特許出願U.S.S.N. 61/868,846の優先権を主張する;これらの出願の各々は、本明細書に参照により組み込まれる。
本発明は、米国政府の支援を受け、Defense Advanced Research Projects Agencyによって授与されたグラントHR0011-11-2-0003およびN66001-12-C-4207;National Institute of General Medical Sciencesによって授与されたグラントT32GM007753;およびNational Institutes of Healthによって授与されたグラントDP1 GM105378のもとでなされた。米国政府は本発明において一定の権利を有する。
転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ(TALEN)は、FokI制限エンドヌクレアーゼ切断ドメインとDNA結合転写活性化因子様エフェクター(TALE)反復アレイとの融合体である。TALENは、所望の標的DNA配列に特異的に結合して切断するように操作することができ、これはin vitroおよびin vivoでの核酸分子、遺伝子およびゲノムの操作のために有用である。操作されたTALENは、限定することなく基礎研究および治療的用途を含む多くの用途の場面において有用である。例えば操作されたTALENは、遺伝子ノックアウトまたはノックインの作製の場面において、ゲノムの操作のために使用することができ、これはそれぞれ、非相同末端結合(NHEJ)を介した、標的遺伝子のノックアウトのための標的ゲノム部位でのDNA切断の誘導によるか、または、相同性配向型修復(HDR)を介した、外来DNA鋳型を使用する標的ゲノム配列の置換による。TALENはしたがって、遺伝子操作された細胞、組織、および生物の生成に有用である。
本明細書および特許請求の範囲で使用される場合、単数形「a」、「an」および「the」は、文脈が明らかに他を示さない限り、単数形と複数形の言及を含む。したがって例えば、「薬剤」への言及は、1つの薬剤および複数の薬剤を含む。
用語「予防」または「予防する」とは、疾患、障害、または症状を発症するリスクのある対象(例えば、対照対象または対象の対照群と比較してリスクが上昇したか、年齢を適合および/または性別を適合させた対象の平均的なリスクと比較して、リスクが高い)に対する予防的処置であって、対象が疾患、障害、または症状を発症する確率の低下(予防なしの確率と比較して)をもたらすものを指すか、および/または、既に確立された障害のさらなる進行の抑制を指す。
転写活性化因子様エフェクターヌクレアーゼ(TALEN)は、FokI制限エンドヌクレアーゼの切断ドメインと、DNA結合転写活性化因子様エフェクター(TALE)反復アレイとの融合体である。TALENは、オフターゲット切断活性を低減し、したがって標的DNA配列に特異的に結合するように操作することができ、例えばゲノム内、in vitroまたはin vivoで標的DNA配列を切断するために使用することができる。かかる操作されたTALENは、in vivoまたはin vitroでゲノムを操作するために使用することができ、例えば標的ゲノム部位でのDNA切断の誘導を介した遺伝子ノックアウトまたはノックインのために、非相同末端結合(NHEJ)を介した標的遺伝子ノックアウトのため、または外来DNA鋳型を使用した相同性配向型修復(HDR)を介した標的ゲノム配列置換のために、使用できる。
[N末端ドメイン]-[TALE反復アレイ]-[C末端ドメイン]-[ヌクレアーゼドメイン]
式中、各「-」は個別に、共有結合または非共有結合的なコンジュゲーションを示し、および式中、コンジュゲーションは、例えば直接結合を介して直接的であっても、または例えばリンカードメインを介して間接的であってもよい。図1も参照されたい。
[N末端ドメイン]-[TALE反復アレイ]-[C末端ドメイン]-[エフェクタードメイン]
または
[エフェクタードメイン]-[N末端ドメイン]-[TALE反復アレイ]-[C末端ドメイン]
この式中、エフェクタードメインは、いくつかの態様において、ヌクレアーゼドメイン、転写活性化因子もしくはリプレッサードメイン、リコンビナーゼドメイン、またはエピゲノム修飾酵素ドメインであってよい。
材料および方法
オリゴヌクレオチド、PCRおよびDNA精製
すべてのオリゴヌクレオチドは、Integrated DNA Technologies(IDT)から購入した。オリゴヌクレオチド配列は、表10に記載されている。PCRは、50μLの1×HF緩衝液中の0.4μLの2U/μL Phusion Hot Start IIDNAポリメラーゼ(Thermo-Fisher)、0.2mMのdNTPミックス(0.2mMのdATP、0.2mMのdCTP、0.2mMのdGTP、0.2mMのdTTP)(NEB)、0.5μM~1μMの各プライマーを用い、次のプログラムで実施した:特に断りのない限り、98℃、1分;[98℃、15秒;62℃、15秒;72℃、1分]を35サイクル。DNA反応物の多くは、以下ではQカラム精製と呼ばれるQIAquick PCR Purification Kit(Qiagen)、または以下ではMカラム精製と呼ばれるMinElute PCR Purification Kit(Qiagen)を用いて精製した。
標準TALENプラスミドは、FLASH法12により、各TALENが10~18塩基対を標的として構築した。N末端変異は、PCRによりQ5 Hot Start Master Mix(NEB)[98℃、22秒;62℃、15秒;72℃、7分]を用いて、リン酸化TAL-N1fwd(N1に対し)、リン酸化TAL-N2fwd(N2に対し)、またはリン酸化TAL-N3fwd(N3に対し)、およびリン酸化TALNrevをプライマーとして使用して行った。1μLのDpnI(NEB)を添加し、反応物を37℃で30分間インキュベートし、次いでMカラム精製した。溶出した~25ngのDNAを、10μLの2×Quick Ligase Buffer、1μLのQuick Ligase(NEB)中、20μLの総容量で、室温(~21℃)で15分、分子内で平滑末端ライゲーションした。このライゲーション反応物1μLを、トップ10のケミカルコンピテント細胞(Invitrogen)に形質転換した。C末端ドメインの変異は、PCRによりTAL-CifwdとTAL-Cirevプライマーを用いてクローニングした後、Qカラム精製した。この溶出DNA~1ngを鋳型として、TALCifwdおよびTAL-Q3(Q3に対し)またはTAL-Q7(Q7に対し)の何れかをプライマーとするPCRに使用し、次いでQカラム精製した。このDNA断片~1μgを、1×NEBuffer 4中のHpaIおよびBamHIで消化し、HpaIおよびBamHIで前もって消化された約2μgの所望のTALENプラスミド中にクローンニングした。
全てが3×FLAGタグを含むTALENタンパク質を、in vitro転写/翻訳により発現させた。TALENをコードするプラスミドまたはプラスミドなし(「空の溶解物」対照)800ngを、TNT(登録商標)Quick Coupled Transcription/Translation System、T7バリアント(Promega)を最終容量20μLで30℃にて1.5時間用いて、in vitro転写/翻訳反応物中に添加した。ウェスタンブロットを使用し、抗FLAG M2モノクローナル抗体(Sigma-Aldrich)を用いてタンパク質を可視化した。TALEN濃度は、1ng~16ngのN末端FLAGタグ付き細菌アルカリホスファターゼ(Sigma-Aldrich)の標準曲線と比較することにより、算出した。
選択前ライブラリーを、部分的にランダム化された標的半部位配列(CCR5A、ATM、またはCCR5B)および完全にランダム化された10~24bpスペーサー配列を含有する、10pmolのオリゴライブラリーを用いて製造した(表10)。オリゴヌクレオチドライブラリーを、2.5mMのMnCl2を補足した1×CircLigase II反応緩衝液(33mMのトリス酢酸、66mMの酢酸カリウム、0.5mMのジチオスレイトール、pH7.5)の全20μL中の、100単位のCircLigase II ssDNA Ligase(Epicentre)で60℃にて16時間インキュベートすることにより、個別に環状化し、ついで80℃で10分インキュベートした。2.5μLの各環状化反応物を、Illustra TempliPhi 100 Amplification Kit(GE Healthcare)を使用するローリングサークル増幅のための基質として、30℃で16時間、50μLの反応物中で用いた。得られたコンカテマーライブラリーを、Quant-iT(商標)PicoGreen(登録商標)dsDNA Kit(Invitrogen)で定量し、異なるスペーサー長のライブラリーを、等モル比で混合した。
TALEN消化のための個別のDNA基質の構築を、表9Bに特定されたオリゴヌクレオチドのペアを制限クローニング14でpUC19(NEB)中に組み合わせることにより、実施した。対応するクローニングされたプラスミドの増幅を、PCRにより(59℃で15秒アニーリング)24サイクル、pUC19OfwdおよびpUC19Orevプライマー(表10B)を用いて実施し、Qカラム精製した。50ngの増幅したDNAを、1×NEBuffer 3中、それぞれ3μLのin vitro転写/翻訳TALEN左および右単量体(~16nMから~12nMの最終TALEN濃度に相当)および6μLの空の溶解物で、総反応容量120μLで消化した。消化反応物を37℃で30分間インキュベートし、次いで1μLの100μg/μL RNase A(Qiagen)で2分間インキュベートし、Mカラム精製した。全体で10μLの溶出DNAに、グリセロールを15%まで添加したものを、5%TBE 18ウェルCriterion PAGEゲル上で(Bio-Rad)、200Vで45分間分析し、次に1×SYBR Gold(Invitrogen)で10分間染色した。バンドを、AlphaImager HP(Alpha Innotech)で可視化し、定量した。
TALENを、哺乳動物発現ベクター12にクローニングし、得られたTALENベクターを前に記載のようにしてU2OS-EGFP細胞にトランスフェクトした12。ゲノムDNAを、前に記載のようにして2日後に単離した12。各アッセイについて、50ngの単離したゲノムDNAの増幅を、PCRにより[98℃で15秒;67.5℃で15秒;72℃で22秒]、表10Cに指定のように4%DMSOありまたはなしのプライマー対を用いて35サイクル実施した。各ゲノム部位のPCR反応物の相対的DNA含量は、Quant-iT(商標)PicoGreen(登録商標)dsDNA Kit(Invitrogen)で定量し、次いで等モル混合物中にプールし、TALENなしの試料と全てのTALEN処置試料とを分離した。150~350bpに相当するDNAを、上述のようにPAGEによって精製した。
Illuminaシーケンシングリードをフィルタリングし、アルゴリズムのセクションで概説されるようにUnix Bashで記述されたスクリプトで解析した。ソースコードは、リクエストにより入手可能である。特異性スコアは、前に記載のようにして算出した14。表3の様々なTALEN選択中の変異数の分布に関する統計解析は、前に記載のようにして実施した14。表7の修飾部位の統計解析は、前に記載のようにして実施した14。
すべてのスクリプトはbashまたはMATLABで記述された。
選択前配列について
1)最初の4塩基(ランダムな塩基)のリードの直後の、16bpの定常配列(CCR5A=CGTCACGCTCACCACT、CCR5B=CCTCGGGACTCCACGCT、ATM=GGTACCCCACTCCGCGT)を探索し、1つの変異を可能にする16bp定常配列を有する配列のみを承認する。
2)定常配列から、少なくとも最小可能限度の完全部位長から最大の完全部位長までの距離で離れている位置における、9bpの最終配列を探索して、完全部位の存在を確認し、この9bpの最終配列を有する配列のみを承認する。(最終配列:CCR5A=CGTCACGCT、CCR5B=CCTCGGGAC、ATM=GGTACGTGC)。
3)完全部位内の各半部位の最良の例を探索し、左の後に右という、正しい左および右半部位の順序のすべての配列を承認する。
4)2つの半部位と、左半部位の左の単一隣接ヌクレオチドおよび右半部位の右の単一隣接ヌクレオチドの間の、DNAスペーサー配列(半部位と定常配列の間の配列)を決定する。
5)シーケンシングリード品質スコアによりフィルタリングして、半部位の位置の4分の3に渡って品質スコアA以上の配列のみを承認する。
1)異なる選択条件に対応する正しい5bpのバーコードから開始される全ての配列の、全配列のリードおよび位置の品質スコアを、別々のファイルに出力する。
2)初期配列から少なくとも最小可能限度の完全部位長離れ、かつ初期配列から最大の完全部位長離れている位置で反復される、5bpのバーコードの直後の初期16bp配列を探索して、反復配列を有する完全部位の存在を確認し、1つの変異を可能にする16bpの反復を有する配列のみを承認する。
3)完全部位内の16bpの定常配列を探索し、1つの変異を可能にする定常配列を有する配列のみを承認する。配列の解析を、定常配列+5’配列から開始して2番目の反復配列まで、次にバーコードの後の初期配列から定常配列まで実施して、1つの完全部位の均等物を挟む複数定常配列を得る。
CONSTANT-LFLANK-LHS-SPACER-RHS-RFLANK-CONSTANT
LFLANK=左隣接配列(単一のランダム塩基として設計)
LHS=左半分部位配列
RHS=右半分部位配列
RFLANK=右隣接配列(単一のランダム塩基として設計)
CONSTANT=定常配列(CCR5A=CGTCACGCTCACCACT、CCR5B=CCTCGGGACTCCACGCT、ATM=GGTACCCCACTCCGCGT)
4)完全部位内の各半部位の最良の例を探索し、左の後に右という、正しい左および右半部位の順序のすべての配列を承認する。
5)半部位の位置で、対応するスペーサー(2つの半部位間の配列)、左隣接および右隣接配列(半部位と定常配列の間の配列)を決定する。
6)5bpのバーコード配列の後のリードの開始から、定常配列の始まりまでの配列を得ることにより、配列末端を決定する。
SEQUENCESTART-RHS-RFLANK-CONSTANT
7)シーケンシングリード品質スコアによりフィルタリングして、半部位の位置の4分の3に渡って品質スコアA以上の配列のみを承認する。
8)選択された配列を、スペーサー側からの各半部位中に0~5個の塩基対の末端を有する配列の数の平均として計算された配列末端の背景の量よりも2.5倍豊富なスペーサー中に配列末端を有する配列のみを承認することによって(配列末端の背景数は、比較のための配列末端の背景として利用した配列末端に最も近い半部位を有する両方の半部位について計算した)、配列末端によってフィルタリングした。
1)Patmatchプログラム39を使用して、パターン配列について次のようにヒトゲノム(GRCh37/hg19ビルド)を探索した:CCR5B左半部位配列(L16、L13またはL10)NNNNNNNNN ... CCR5B右部位配列(R16、R13またはR10)[M,0,0]、ここでNの数は12~25で変化し、およびM(可能な変異を示す)は0~14で変化する。
2)プログラムがX個以下の変異を有するすべての配列を出力するため、出力されるオフターゲット部位の数は脱累積されて、標的部位から離れた変異の特定数である、ヒトゲノム中のオフターゲット部位の数がもたらされるからである。
1)各配列について、プライマー配列を使用してゲノム部位を同定した。
2)標的部位の左の8bpに対応する参照ゲノム配列、および完全標的部位の右の8bp(またはシーケンシングリードの最末端のゲノム部位については6bp)の参照ゲノム配列を含む配列は、標的部位配列と考えられた。
3)参照ゲノム部位と同じ大きさに対応する任意の標的部位配列は、非修飾と考えられ、参照サイズではない任意の配列は、ClustalW40で参照ゲノム部位と整列させた。
4)2つ半部位配列の間のDNAスペーサー配列における2つより多くの挿入または2つより多くの欠失を有する整列された配列は、インデルと考えられた。
CCR5およびATMを標的とするTALENの特異性プロファイリング
我々は、種々の長さの左および右半部位を標的とするTALEN、および異なるドメインバリアントを有するTALENを含む、合計41のヘテロ二量体TALEN対(以下TALENと呼ぶ)の特異性をプロファイリングした。41のTALENのそれぞれは、2つの異なるヒト遺伝子CCR5およびATMにおける、3つの異なる配列(CCR5A、CCR5B、またはATMと呼ぶ)の1つを標的とするように設計した(図7)。我々は、前述のin vitro選択法14の改良版に、選択のスループットおよび感度を高める変更を加えて使用した(図1B)。
選択によって報告されたオフターゲット切断活性が、細胞でのオフターゲット切断に関連しているかどうかを試験するために、我々はin vitroでの選択結果を用いて、機械学習アルゴリズムを、ヒトゲノムで潜在的なTALENオフターゲット部位を生成するように訓練した26。このコンピューターのステップが必要であるのは、選択前ライブラリーは6個以下の変異を有する全ての配列をカバーするが、一方CCR5配列およびATM配列については、ヒトゲノムのほぼすべての潜在的なオフターゲット部位が、標的配列に対して6より多くの位置で異なるからである。このアルゴリズムは、切断が観察されなかった標的ライブラリーからの配列に対する、TALENにより切断された配列で生じる、標的の各位置の各ヌクレオチドの事後確率を算出する27。次にこれらの事後確率を用いて、アルゴリズムの訓練に使用したTALENが、10~30bpの単量体スペーシングのヒトゲノムにおける、全ての潜在的標的配列を切断する尤度(likelihood)をスコア付けした。機械学習アルゴリズムを使用して、我々は、7~14の位置においてオンターゲット配列と異なる、36のCCR5Aおよび36のATM TALENオフターゲット部位を同定した(表6)。
TALE反復の独立した結合は、塩基対当たりのTALEN特異性が、標的部位の長さとは無関係であることを単純化して予測する。TALEアレイの長さとオフターゲット切断の間の関係を実験的に特徴づけるために、我々は、10、13、または16bp(5’Tを含む)を標的とするTALENを、左(L10、L13、L16)および右(R10、R13、R16)の両方の半部位について構築した。左および右のCCR5B TALENの9つすべての可能な組み合わせを表すTALENを、in vitro選択に供した。結果は、より短いTALENが、より長いTALENよりも、標的化塩基対当たりより大きな特異性を有することが明らかになった(表3)。例えば、L10+R10 TALENにより切断された配列は、認識塩基対当たり平均して0.032の変異を含んでいるのに対し、L16+R16 TALENにより切断されたものは、認識塩基対当たり平均して0.067の変異を含んでいた。16+16塩基対を標的とする最長のCCR5B TALEN、または18+18bpを標的とするCCR5AおよびATM TALENによる選択の場合、平均の選択濃縮値は、変異数の関数としての単純な指数関数的減少には従わない(図4Aおよび表8)。
長いTALENは短いTALENより、ミスマッチ配列(図4A)に対してより耐容であるが、ヒトゲノムには、短い標的部位よりも長い標的部位について、はるかに少ない数の密接に関連するオフターゲット部位が存在する(図4B)。オフターゲット部位の存在量と切断効率は両方とも、ゲノムの場面におけるオフターゲット切断イベントの数に寄与するため、我々は、全体的なゲノムの切断特異性をTALEN長の関数として、与えられた長さの変異配列の外挿平均濃縮度値に、ヒトゲノムにおける対応する変異配列の数を乗じて算出した。より長い標的部位の長さに起因する潜在的なオフターゲット部位の存在量の減少は、より長いTALENについて観測された認識塩基対当たりの特異性の減少を上回るに充分な大きさである(図4C)。その結果、長いTALENは、短いTALENよりも、20~32bpの部位を標的とした試験されたTALEN長さに関して、ヒトゲノムにおける潜在的な切断部位のセットに対しより特異的であることが、予測されている。
上記の知見は、TALEN特異性を、効率的なオンターゲット切断を可能にするために必要とされるものを超えた非特異的DNA結合エネルギーを低減することによって、改善可能であることを示唆する。最も広く使用されている、TALE反復アレイとFokIヌクレアーゼドメインの間の63-aa C末端ドメインは、10個のカチオン性残基を含む。我々は、標準TALE C末端ドメインのカチオン性電荷を減少させることは、非特異的DNA結合を減少させ29、TALEN特異性を改善するであろうと推測した。
in vitroで観測された、操作されたTALENの特異性の増加が、ヒト細胞にも適用されるかどうかを決定するために、オンターゲット部位およびトップ36の予測オフターゲット部位のTALEN誘導性の修飾率を、標準63-aa、Q3、またはQ7のC末端ドメインおよびEL/KKまたはELD/KKRのFokIドメインの全6つの可能な組み合わせを含むCCR5AおよびATM TALEN(合計12のTALEN)について測定した。
本明細書に記載のTALEN結合および特異性のモデルは、過剰なTALEN結合エネルギーを低減することが、TALENのDNA切断特異性を増加させることを予測する。この予測をさらに試験し、TALEN特異性を潜在的にさらに強化するために、我々は、CCR5AおよびATMを標的とするTALENのN末端ドメインにおいて、1個(「N1」、K150Q)、2個(「N2」、K150QおよびK153Q)、または3個(「N3」、K150Q、K153Q、およびR154Q)のLysまたはArg残基を、Glnに変異させた。これらのN末端残基は、以前の研究において、DNAに非特異的に結合することが示されており、これらの特定の残基における、カチオン性電荷を中和するための変異は、非特異的DNA結合エネルギーを減少させる33。我々は、これらのN末端変異からの非特異的結合エネルギーの減少は、過剰なTALEN結合エネルギーを減少させ、特異性の増加をもたらすとの仮説をたてた。これら3つのTALENバリアント上でのin vitro選択は、より少ないカチオン性のN末端TALENが実際に、オンターゲット切断のより大きな濃縮値を示すことを明らかにした(表5)。
試験したすべてのTALENコンストラクトは、両方の半部位にわたって意図した塩基対を特異的に認識するが(図8~13)、ただし、ATM TALENのいくつかは、スペーサーに隣接する塩基対とは特異的に相互作用しない(ほとんどのC末端TALE反復により標的化)(図10および11)。標準TALENと、操作されたC末端またはN末端ドメインを含有するものの、広い特異性プロファイルを比較するために、標準、Q3、またはQ7のC末端ドメインおよびN1、N2、またはN3のN末端ドメインを有するCCR5AおよびATM TALENを使用した選択からの各標的塩基対の特異性スコアから、標準TALEN(標準63-aa C末端ドメイン、野生型N末端ドメイン)上の選択からの対応する特異性スコアを差し引いた。
様々なTALEN構築物(C末端変異、N末端変異、およびFokIバリアント)のスペーサー長および様々なTALEN濃度の選好を評価するために、10~24塩基対のスペーサー長を有するライブラリーメンバーの濃縮値の算出を、標準、Q3、Q7、または28-aa C末端ドメイン;N1、N2、またはN3 N末端変異;およびEL/KKまたはELD/KKR FokIバリアントの様々な組み合わせを有するCCR5AおよびATM TALENによる選択のそれぞれについて、4nM~32nMのCCR5AおよびATM TALENにて実施した(図16)。試験した全濃度において、N末端バリアント、C末端バリアント、およびのFokIバリアントは、3つの顕著な例外を除いて、14~24塩基対の範囲の広いDNAスペーサー長の選好を示した。第1に、以前の報告と整合して34-36、CCR5A 28-aa C末端ドメインは、標準C末端ドメインのより広範なDNAスペーサー長の選好よりはるかに狭い、DNAスペーサー長の選好を示した。第2に、Q7 C末端ドメインを含有するCCR5A TALENは、標準C末端ドメインバリアントと比較して、12塩基のスペーサーに対する耐性の増加を示した(図16)。このわずかに広がったスペーサー長の選好は、おそらくはTALEN:DNA境界にそったより少数の非特異的タンパク質:DNA相互作用から生じる、Q7 C末端ドメインのより大きな立体配座的柔軟性を反映している可能性がある。第3に、Q7 C末端ドメインのATM TALENおよびN3変異体のN末端ドメインのATM TALENは、狭いスペーサーの選好を示した。
1012の密接に関連するオフターゲット配列でチャレンジした41のTALENのin vitro選択およびその後の分析は、次の4つの重要な知見を通して、TALEN特異性についての我々の理解を報告する:(i)TALENは、その意図する標的塩基対に対して、全ての位置において高度に特異的であり、各TALE反復アレイのN末端TALEN末端近くで(結合したDNAの5’末端に相当)特異性が増加する;(ii)長いTALENは、ゲノムの場面においてより特異的であり、一方短いTALENは、ヌクレオチド当たりのより高い特異性を有する;(iii)TALE反復はそれぞれ、対応する塩基対に比較的独立的に結合する;および(iv)過剰なDNA結合親和性は、オフターゲット部位に対してTALEN活性を増加させ、したがって特異性の減少をもたらす。
標準N末端ドメイン配列の少なくとも1つのカチオン性アミノ酸残基が、生理学pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている、多数のTALENを生成した。TALENは、それらのN末端ドメインにおいて、グリシン(G)および/またはグルタミン(Q)の置換を含んでいた(図18参照)。操作されたTALENの切断の選好の評価は、グリシン(G)に対する変異が、グルタミン(Q)に対するものと同等であることを実証した。TALENのN末端ドメイン(K150Q、K153Q、およびR154Q)における正に荷電したアミノ酸の変異は、QまたはGのいずれかへの変異に対する結合親和性およびオフターゲット切断に、類似の減少をもたらした。例えば、M3およびM4のN末端を含むTALEN、これはそれぞれ、QまたはGのいずれかに変異した同一アミノ酸(R154)を含むが、これらはほぼ同量の切断を示した。同様に、QまたはG置換が位置K150およびR154で導入されている点でのみ異なる、M6およびM8のN末端を含むTALEN、および、QまたはG置換が位置K150、K153、およびR154で導入されている点でのみ異なる、M9およびM10のN末端を含むTALENは、類似の切断活性を示した。
本明細書において提供される操作されたTALENの、クローニングおよび発現のためのプラスミドを生成した。プラスミドのマップを、図19に示す。プラスミドは、例えば本明細書で提供される操作されたドメインなどのN末端およびC末端ドメイン、およびTALE反復の、モジュラークローニングを可能にし、所望の操作されたTALENをコードする組換え核酸を生成する。プラスミドはまたアミノ酸タグをコードし、該タグは例えば、N末端FLAGタグおよびC末端V5タグであり、これらは必要に応じてコードされたTALENの精製または検出のために利用することができる。これらのタグの使用は任意であり、当業者は、タグ付けされたTALENタンパク質をコードするために、TALENをコードする配列は、タグをコードする配列とインフレームでクローニングされなければならないことを理解するであろう。
当業者は、日常的な実験を超えるものを使用することなく、本明細書に記載の本発明の特定の態様に対する多くの均等物を認識し、または確認することができるであろう。本発明の範囲は上記の説明に限定されることを意図せず、むしろ添付の特許請求の範囲に記載されている通りである。
Claims (32)
- 核酸分子中の標的配列を切断するin vitroでの方法であって、標的配列を含む核酸分子を、TALENが標的配列に結合して標的配列を切断するのに好適な条件下で、標的配列に結合するTALENと接触させることを含み、任意に、標的配列が細胞中に存在し、
ここで、TALENは、
C末端TALEドメイン;C末端TALEドメインにコンジュゲートしているTALE反復アレイ;およびTALE反復アレイにコンジュゲートしているN末端TALEドメインを含み;
(i)C末端TALEドメインは、下記アミノ酸置換:K48Q、R52Q、およびR61Qを含む点で、配列番号22の標準C末端ドメインとは異なるアミノ酸配列を含み、ここで、標的核酸分子に対するC末端ドメインの結合エネルギーが、標準C末端ドメイン(配列番号22)の結合エネルギーより少ない、ならびに/あるいは
(ii)N末端TALEドメインは、配列番号2、配列番号3または配列番号4のアミノ酸配列を含み、ここで、標的核酸分子に対するN末端ドメインの結合エネルギーが、標準N末端ドメイン(配列番号1)の結合エネルギーより少ない、
前記方法。 - C末端ドメインの正味電荷が、+6以下、+5以下、+4以下、+3以下、+2以下、+1以下、0以下、-1以下、-2以下、-3以下、-4以下、または-5以下である、請求項1に記載の方法。
- N末端ドメインが、標準N末端ドメイン配列の少なくとも1つのカチオン性アミノ酸残基が生理的pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている点で標準N末端ドメイン配列と異なっているアミノ酸配列を含む、請求項1または2に記載の方法。
- C末端ドメインが、標準C末端ドメイン配列の少なくとも1つのカチオン性アミノ酸残基が生理的pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている点で標準C末端ドメイン配列と異なっているアミノ酸配列を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインにおいて、少なくとも1個の、少なくとも2個の、少なくとも3個の、少なくとも4個の、少なくとも5個の、少なくとも6個の、少なくとも7個の、少なくとも8個の、少なくとも9個の、少なくとも10個の、少なくとも11個の、少なくとも12個の、少なくとも13個の、少なくとも14個の、または少なくとも15個のカチオン性アミノ酸が、生理的pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、配列番号22において、1または2以上の次のアミノ酸置換:K37Q、K38Q、R49Q、およびR53Qをさらに含む、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、配列番号22において、次の各アミノ酸置換:K37Q、K38Q、K48Q、R49Q、R52Q、R53QおよびR61Qを含む、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。
- TALENが、ヌクレアーゼ切断ドメインを含む、請求項1~7のいずれか一項に記載の方法。
- ヌクレアーゼ切断ドメインが、FokIヌクレアーゼドメインであり、任意に、FokIヌクレアーゼドメインが配列番号26~30で提供される配列を含む、請求項8に記載の方法。
- TALENが単量体であり、任意に、TALEN単量体が、別のTALEN単量体と二量体化してTALEN二量体を形成することができ、任意に、TALEN二量体がヘテロ二量体であり、および任意に、TALENは、二量体化の際に標的配列を切断する、請求項1~9のいずれか一項に記載の方法。
- TALENが、疾患または障害に関連することが知られている遺伝子内の標的配列に結合し、任意に、疾患がHIV/AIDSまたは増殖性疾患である、請求項1~10のいずれか一項に記載の方法。
- TALENが、CCR5標的配列、ATM標的配列、またはVEGFA標的配列に結合する、請求項1~11のいずれか一項に記載の方法。
- N末端ドメインが、配列番号1の位置K57、K78、R84、R97、K110、K113およびR114に対応する位置における1または2以上のアミノ酸置換をさらに含む、請求項1~12のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、配列番号22の位置R8、R30、およびR57に対応する位置における1または2以上のアミノ酸置換をさらに含む、請求項1~13のいずれか一項に記載の方法。
- 下記に定義された通りのC末端TALEドメインおよび/またはN末端TALEドメインを含む操作されたTALENを製造する方法であって、方法が、N末端TALEドメインおよび/またはC末端TALEドメインの少なくとも1つのアミノ酸を、生理的pHで電荷を有さないかまたは負電荷を有するアミノ酸で置き換えること;したがって、減少した正味電荷のN末端ドメインおよび/またはC末端ドメインを有する、操作されたTALENを生成すること、を含み、
置き換えられるアミノ酸が、アルギニン(R)またはリジン(K)であり、任意に、生理的pHで電荷を有さないかまたは負電荷を有するアミノ酸が、グルタミン(Q)またはグリシン(G)であり、
ここで、TALENは、
C末端TALEドメイン;C末端TALEドメインにコンジュゲートしているTALE反復アレイ;およびTALE反復アレイにコンジュゲートしているN末端TALEドメインを含み;
(i)C末端TALEドメインは、下記アミノ酸置換:K48Q、R52Q、およびR61Qを含む点で、配列番号22の標準C末端ドメインとは異なるアミノ酸配列を含み、ここで、標的核酸分子に対するC末端ドメインの結合エネルギーが、標準C末端ドメイン(配列番号22)の結合エネルギーより少ない、ならびに/あるいは
(ii)N末端TALEドメインは、配列番号2、配列番号3または配列番号4のアミノ酸配列を含み、ここで、標的核酸分子に対するN末端ドメインの結合エネルギーが、標準N末端ドメイン(配列番号1)の結合エネルギーより少ない、
前記方法。 - N末端TALEドメインおよび/またはC末端TALEドメインにおいて置き換えられる少なくとも1つのアミノ酸が、カチオン性アミノ酸を含み、
任意に、少なくとも1つのアミノ酸を置き換えるアミノ酸が、アニオン性アミノ酸または中性のアミノ酸であり、および/または
任意に、標準C末端TALEドメインの少なくとも2個、少なくとも3個、少なくとも4個、少なくとも5個、少なくとも6個、少なくとも7個、少なくとも8個、少なくとも9個、少なくとも10個、少なくとも11個、少なくとも12個、少なくとも13個、少なくとも14個、または少なくとも15個のアミノ酸を、生理的pHで電荷を有さないかまたは負電荷を有するアミノ酸で置き換えることを含む、
請求項15に記載の方法。 - C末端ドメインの正味電荷が、+6以下、+5以下、+4以下、+3以下、+2以下、+1以下、0以下、-1以下、-2以下、-3以下、-4以下、または-5以下である、請求項15または16に記載の方法。
- N末端ドメインが、標準N末端ドメイン配列の少なくとも1つのカチオン性アミノ酸残基が生理的pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている点で標準N末端ドメイン配列と異なっているアミノ酸配列を含む、請求項15~17のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、標準C末端ドメイン配列の少なくとも1つのカチオン性アミノ酸残基が生理的pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている点で標準C末端ドメイン配列と異なっているアミノ酸配列を含む、請求項15~18のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインにおいて、少なくとも1個の、少なくとも2個の、少なくとも3個の、少なくとも4個の、少なくとも5個の、少なくとも6個の、少なくとも7個の、少なくとも8個の、少なくとも9個の、少なくとも10個の、少なくとも11個の、少なくとも12個の、少なくとも13個の、少なくとも14個の、または少なくとも15個のカチオン性アミノ酸が、生理的pHで電荷を示さないかまたは負電荷を示すアミノ酸残基で置き換えられている、請求項15~19のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、配列番号22において、1または2以上の次のアミノ酸置換:K37Q、K38Q、R49Q、およびR53Qをさらに含む、請求項15~20のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、配列番号22において、次の各アミノ酸置換:K37Q、K38Q、K48Q、R49Q、R52Q、R53QおよびR61Qを含む、請求項15~21のいずれか一項に記載の方法。
- TALENが、ヌクレアーゼ切断ドメインを含む、請求項15~22のいずれか一項に記載の方法。
- ヌクレアーゼ切断ドメインが、FokIヌクレアーゼドメインであり、任意に、FokIヌクレアーゼドメインが配列番号26~30で提供される配列を含む、請求項23に記載の方法。
- TALENが単量体であり、任意に、TALEN単量体が、別のTALEN単量体と二量体化してTALEN二量体を形成することができ、任意に、TALEN二量体がヘテロ二量体であり、および任意に、TALENは、二量体化の際に標的配列を切断する、請求項15~24のいずれか一項に記載の方法。
- TALENが、疾患または障害に関連することが知られている遺伝子内の標的配列に結合し、任意に、疾患がHIV/AIDSまたは増殖性疾患である、請求項15~25のいずれか一項に記載の方法。
- TALENが、CCR5標的配列、ATM標的配列、またはVEGFA標的配列に結合する、請求項15~26のいずれか一項に記載の方法。
- N末端ドメインが、配列番号1の位置K57、K78、R84、R97、K110、K113およびR114に対応する位置における1または2以上のアミノ酸置換をさらに含む、請求項15~27のいずれか一項に記載の方法。
- C末端ドメインが、配列番号22の位置R8、R30、およびR57に対応する位置における1または2以上のアミノ酸置換をさらに含む、請求項15~28のいずれか一項に記載の方法。
- ヌクレアーゼ切断ドメイン;C末端TALEドメイン;C末端TALEドメインにコンジュゲートしているTALE反復アレイ;およびTALE反復アレイにコンジュゲートしているN末端TALEドメイン
を含む、TALENであって、
(i)N末端TALEドメインは、配列番号1のアミノ酸配列において、K110が、生理的pHで、電荷を示さないか、または負電荷を示すアミノ酸残基で、置き換えられているアミノ酸配列を含み、ならびに任意に、配列番号1のアミノ酸配列において、K57、K78、R84、R97、K113およびR114のうちの少なくとも1つが、生理的pHで、電荷を示さないか、または負電荷を示すアミノ酸残基で、さらに置き換えられているアミノ酸配列を含む、ならびに/あるいは、
(ii)C末端TALEドメインは、配列番号22のアミノ酸配列において、K48、R52、およびR61が、生理的pHで、電荷を示さないか、または負電荷を示すアミノ酸残基で、置き換えられているアミノ酸配列を含み、ならびに任意に、配列番号22のアミノ酸配列において、R8、R30、K37、K38、R49、R53およびR57のうちの少なくとも1つが、生理的pHで、電荷を示さないか、または負電荷を示すアミノ酸残基で、さらに置き換えられているアミノ酸配列を含む、
ならびに、
前記TALENは、標準N末端ドメイン(配列番号1)を含むN末端TALEドメインおよび標準C末端ドメイン(配列番号22)を含むC末端TALEドメインを含むTALENと比較して、増加したオンターゲット切断効率を有する、
前記TALEN。 - 請求項30に記載のTALENと、該TALENと共にヘテロ二量体を形成することができる異なるTALENとを含む組成物であって、ここで該二量体がヌクレアーゼ活性を示す、前記組成物。
- 請求項30に記載のTALENまたは請求項31に記載の組成物、および薬学的に許容し得る賦形剤を含む、医薬組成物であって、任意に、TALENが疾患または障害と関連することが知られている遺伝子内の標的配列に結合し、および前記組成物が疾患または障害に関連する症状を軽減するあるいは疾患または障害を処置するための有効量のTALENを含む、前記医薬組成物。
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