JP6621820B2 - ゲノムでプログラマブルヌクレアーゼの非標的位置を検出する方法 - Google Patents
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Description
組換えCas9タンパク質は、大腸菌(E.coli)から精製するか、またはToolgen(South Korea)から購入した。sgRNAは、T7 RNA重合酵素を用いてインビトロ転写により合成した。具体的に、sgRNA鋳型を反応緩衝液(40mMのTris‐HCl、6mMのMgCl2、10mMのDTT、10mMのNaCl、2mMのspermidine、NTP、及びRNase inhibitor)でT7 RNA重合酵素とともに37℃で8時間反応させた。転写されたsgRNAから鋳型DNAを除去するために、DNaseIとともにインキュベーションした後、PCR purification kit(Macrogen)を用いて精製した。
HeLa細胞は、10%のFBSを含有するDMEM培地で培養した。lipofectamine 2000(Life Technologies)を用いて、Cas9発現プラスミド(500ng)及びsgRNAをコードするプラスミド(500ng)を8x104個のHeLa細胞に導入した。48時間後、製造社の指針に従ってDNeasy Tissue kit(Qiagen)でゲノムDNAを分離した。
DNeasy Tissue kit(Qiagen)を用いて、HAP1細胞からゲノムDNAを精製した。Digenome‐seqのために、ゲノムDNAのインビトロ切断を行った。具体的に、RNP(ribonucleoprotein)を形成するために、常温で10分間Cas9タンパク質及びsgRNAをインキュベーションした。次に、前記RNP複合体とゲノムDNAを、反応緩衝液(100mMのNaCl、50mMのTris‐HCl、10mMのMgCl2、及び100μg/mlのBSA)で37℃で8時間反応させた。sgRNAを分解するために、前記過程で切断されたゲノムDNAにRNase A(50ug/mL)を処理し、DNeasy Tissue kit(Qiagen)でさらに精製した。
全ゲノムシーケンシング(whole genome sequencing、WGS)のために、切断されたDNAをソニケータ(sonicator)で破砕し、ライブラリを作るためにアダプタ(adaptor)とライゲーション(ligation)した。前記ライブラリを用いて、Macrogen(South Korea)でIllumina HiSeq X Ten Sequencerを用いてWGSを行った。次に、ヒト標準塩基配列(reference genome)hg19に対して配列ファイルを整列するためにIsaacを用いた。切断点数付与システムを用いてDNA切断位置を確認した。
Phusion重合酵素(New England biolabs)を用いて標的位置及び潜在的非標的位置を増幅した。NaOHでPCR増幅産物を変性させ、Illumina MiSeqを用いてペアエンド(paired‐end)シーケンシングを行った後、インデル(insertion and deletion、Indel)頻度を計算した。
プログラマブルヌクレアーゼの非標的位置を検出することができる方法を開発するために、本発明者らは、代表的にRGEN(RNA‐guided engineered nuclease)を用いて実験を行った。但し、これは本発明の技術を説明するための一実施例に過ぎず、適用可能なプログラマブルヌクレアーゼの種類がRGENに限定されるものではない。本発明のゲノムでプログラマブルヌクレアーゼの非標的位置を検出する方法は、インビトロでゲノムを特定標的のためのプログラマブルヌクレアーゼで切断した後、全ゲノムシーケンシング(whole genome sequencing、WGS)を行い、それを分析することで前記プログラマブルヌクレアーゼの非標的位置を検出する方法であって、本発明者らはこれをDigenome‐seq(nuclease‐digested genomic DNA sequencing)と命名した。
インビトロでRGENを用いてゲノムDNAを切断した場合、切断位置で垂直整列された塩基配列データ(sequence read)を作ることができるかを確認するために、4種類のゲノムDNAセットを用いて全ゲノムシーケンシング(whole genome sequencing、WGS)を行った。
ゲノムレベルで潜在的RGEN非標的位置を確認するために、塩基配列データの垂直整列を探すためのコンピュータプログラムを開発した。先ず、単一ヌクレオチドレベルで、HBBの標的位置及び検証された2個の非標的位置(OT1及びOT3)の付近のヌクレオチド位置から始まる5´末端を有する塩基配列データの数を表示した(図4a)。ワトソン鎖(Watson strand)及びクリック鎖(Crick strand)の両方が配列分析されたため、それぞれの鎖に対応する略同一の数の塩基配列データが切断位置で互いにすぐ横で観察され、二重ピークが生成されると推測した。予測したとおり、Digenomeは前記3個の切断位置(標的位置、OT1及びOT3)で二重ピークを生成した(図2c、4b及び4c)。インビトロでRGENを処理していない完全なゲノムは、前記位置で二重ピークパターンを生成しなかった。
前記2つのDigenomeで確認された74個の共通位置で、非標的効果を立証するためにディープシーケンシングを行った(図5e)。さらに、標的位置と3ヌクレオチドが異なって、Digenome‐seqにより検出されなかったその他の8個の位置も試験した。前記8個の位置では、少なくとも0.1%の頻度で非標的インデルが検出されなかった。これは、陰性対照群より大きい値である(Fisher exact test、p<0.01)(図5d)。インデルは、0.11%〜87%の頻度で74個の位置のうち既に検証された標的位置、OT1及びOT3位置を含む総5個の位置で観察された(図5e、7a及び7b)。新しく検証された他の2個の非標的位置のうち、HBB_48では0.11%の頻度で、HBB_75では2.2%の頻度でインデルが検出された。前記2つの位置は、標的位置と3ヌクレオチドが異なった。標的位置と5´末端で1個のヌクレオチドが異なる20‐nt sgRNA配列に比べて、HBB_48位置は3個のヌクレオチド、HBB_75位置では2個のヌクレオチドが一致しなかった。20‐nt sgRNA配列に比べて、前記検証された非標的位置はDNAまたはRNAバルジを有しておらず、5´‐NGA‐3´または5´‐NAG‐3´のように一般的ではないPAM配列も有していなかった。前記2個の新しい非標的位置及びその他の3個の位置がそれぞれの3つのDigenomeで共通的に確認された。前記結果から、Digenome‐seqが、ゲノムレベルのヌクレアーゼ非標的効果を確認することができる、敏感で再現可能な方法であることが分かる。
次に、本発明者らは、HBB遺伝子以外に他の遺伝子でもDigenome‐seqが適用可能であるかを確認しようとした。VEGF‐A位置で標的突然変異を引き起こし、追加的に4個の相同性位置で非標的突然変異を引き起こす他のRGENに対するDigenome‐seqを行った。標的位置及び既に検証された4個の非標的位置を含む総81個の位置で二重ピークパターンを確認した(図8a及び図9)。前記81個の位置で、全てのDNA配列が一般的な5´‐NGG‐3´PAM配列を含むことを確認した。標的配列と前記配列を比較して、全てのヌクレオチド位置が一致することを確認した。さらに、デノボモチーフを得るために前記配列を互いに比較した。その結果、配列ロゴも略全てのヌクレオチド位置で標的配列と一致したが、これは、20‐nt sgRNA配列で全てのヌクレオチドがRGENの特異性に寄与することを示唆する(図8b及び8c)。
先ず、本発明者らは、ヒトゲノムに対するWGS(whole genome sequencing)データを用いてインビトロ切断位置を確認することができる点数付与システムを開発した。前記実験例1〜5で確認したDigenome‐seq分析は、高度の再現性を有するが、不均一な切断パターンまたは低いシーケンシング深さ(depth)を有する一部位置が漏れる恐れがあるという問題がある。本発明者らは、Cas9タンパク質が鈍端に1つまたは2つのヌクレオチドオーバーハング(overhang)を生成する場合を推正することで、前記位置を確認することができるということを見出した。そこで、塩基配列データの整列パターンに基づいて、各ヌクレオチド位置にDNA切断点数を付与した(図11)。前記プログラムを用いて、既存のDigenome‐seqによっては検出されなかった多数の追加的な位置を検出した。切断点数のゲノムレベルプロット(plot)は、切断されなかったゲノムDNAで偽陽性位置が殆ど発見されないということを示す(図12a)。全体ゲノムで確認された少数の偽陽性位置はゲノムDNAで自然的に発生するインデル(insertion and deletion、Indel)を含むが、これは容易にフィルタリングすることができる。2つの独立したDigenome‐seq分析で見られるように、ヒトゲノムに対する切断点数は高度の再現性を有する(R2=0.89)(図13)。
他の方法とは異なって、Digenome‐seqは、ヌクレアーゼの数に比例してシーケンシング深さを増加させることなく複合的に用いられることができる。本発明者らは、IDLV検出及びその他の方法に比べてより敏感性を有するGUIDE‐seqを用いて個別的に分析された10個のsgRNAを選定した。本発明者らは、Cas9タンパク質、10個のsgRNA、及びHBB遺伝子を標的とする1つの追加的なsgRNAの混合物でヒトゲノムDNAを切断し、2つの独立したWGS分析を行った(図15a)。次に、前記点数付与システムを用いて、ゲノムレベルでインビトロ切断位置を叩いた。その結果、ヒトゲノムで総964個の位置を確認した(表3〜表12)。次に、前記位置を標的位置との編集距離(edit distance)に応じて分類した(図15a及び表3〜表12)。
前記11個のsgRNAは、ゲノムレベルで広範囲の特異性を示した。ヒトゲノムで、sgRNA1つ当りの切断位置の数は13〜302個であることが確認された(図16a及び表3〜表12)。期待したとおり、Cas‐OFFinderを用いてヒトゲノムで確認された標的位置の全て、そして前記それぞれの標的位置と1または2個のヌクレオチド不一致を有する位置の殆どが、複合Digenome‐seqを行った時に検出された(図16b)。しかし、3個以上のヌクレオチド不一致を有する位置は殆ど検出されなかった。すなわち、Digenome‐seqにより検出された位置の比率は、ヌクレオチド不一致の数が3から6に増加するにつれて幾何級数的に減少した(図16b)。また、シード部位(seed region)で2個以上のヌクレオチド不一致を有する位置は、0または1個の不一致を有する位置よりもインビトロで切断されなかった(P<0.01、Student´s t‐test)。
平均的に、複合Digenome‐seqは、既存のGUIDE‐seqにより検出した位置のうち80±8%の位置を成功的に叩いた(図16a)。例えば、VEGFA1、RNF2、及びHEK293‐3位置に特異的な3個のsgRNAを用いてGUIDE‐seqにより検出した全ての位置が、Digenome‐seqによっても確認された。また、複合Digenome‐seqは、GUIDE‐seqによっては検出されなかった総703個の新しい位置(sgRNA当り平均70個)を検出した(図16a)。結果的に、GUIDE‐seqは、複合Digenome‐seqにより検出した位置の25±6%を検出したのである。RNF2特異的sgRNAは、Digenome‐seqの利点をみせる良い事例である。先行研究によると、2回の独立したGUIDE‐seq分析を行ったが、このsgRNAに対する非標的位置を検出することができなかった。しかし、Digenome‐seqは、標的位置に加えて、12個の切断位置を叩いた。さらに、Digenome‐seqの陽性位置の数とGUIDE‐seqの陽性位置の数との間に相関関係不足(R2=0.20)が観察された(図16d)。
次に、NGS(next‐generation sequencing)プラットフォームを用いて、Digenome‐seq及びGUIDE‐seqにより確認された位置(表14〜表23)のうち一部位置に対して、それぞれのsgRNAとCas9タンパク質がヒト細胞内で非標的インデルを誘導することができるかを確認した。
NGSにより検証された非標的位置(=160)及び検証されなかった非標的位置(=144)でのインデル頻度から、具体的に非標的効果を確認しようとした。不一致ヌクレオチドの数及び標的位置に対する非標的位置でのインデル頻度のプロットで、2個以下のヌクレオチド不一致を有する非標的位置が細胞内で効果的に切断されることを確認し(平均インデル頻度=5.38%)、3個以上のヌクレオチド不一致を有する場合、切断されにくいことを確認した(平均インデル頻度=0.14%以下)(図22a)。標的位置でのインデル頻度は60±7%と示された。検証または非検証位置でヌクレオチド不一致は、PAM‐遠位及びPAM‐近位の部位に略均一に分布されていた。3個以上のヌクレオチド不一致を有する検証または非検証位置は、PAM‐遠位部位がシード部位ほど重要であった(図22b及び23c)。すなわち、シード部位で0または1個のヌクレオチド不一致を有する位置でのインデル頻度は、2個以上の不一致を有する位置ほど低かった。
本発明者らは、複合Digenome‐seqの標的を大規模に拡張した場合にも、非標的位置を効果的に検出することができるかを確認しようとした。
さらに、本発明者らは、同一のアプローチ法により、RGENに代えて ZFNの非標的位置も検出することができるかを確認しようとした。
Claims (22)
- (a)分離されたゲノムDNAを標的特異的プログラマブルヌクレアーゼ(programmable nuclease)で切断するステップと、
(b)前記切断されたDNAに対する次世代シーケンシング(next generation sequencing)を行うステップと、
(c)前記シーケンシングにより得た塩基配列データ(sequence read)を整列して、切断されたDNAの5´末端が垂直整列された位置、または、切断されたDNAの同一の5´末端を有する塩基配列データの数を数えて描いた5´末端プロットで、プログラマブルヌクレアーゼにより切断された二本鎖のそれぞれの鎖によって示される二重ピークパターンを示す位置を、切断された位置として決定するステップと、
(d)前記切断された位置が標的位置(on‐target site)ではない場合、非標的位置として判断するステップと、
を含む、プログラマブルヌクレアーゼの非標的位置(off‐target site)を検出する方法。 - 前記ゲノムDNAは、標的特異的プログラマブルヌクレアーゼが発現される細胞、または発現されない細胞から分離された物である、請求項1に記載の方法。
- 前記整列は標準塩基配列(reference genome)に塩基配列データをマッピングした後、BWA/GATKまたはISAACを用いて行う、請求項1に記載の方法。
- ワトソン鎖(Watson strand)とクリック鎖(Crick strand)に該当する塩基配列データ(sequence read)がそれぞれ2つ以上ずつ垂直整列される位置を非標的位置であると判断するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 20%以上の塩基配列データが垂直整列され、それぞれのワトソン鎖及びクリック鎖で同一の5´末端を有する塩基配列データの数が10以上である位置が非標的位置であると判断するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記分離されたゲノムDNAはプログラマブルヌクレアーゼが発現された細胞から分離されたものであって、前記DNAの非標的位置でインデルを確認するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記インデルを確認することは前記非標的位置に対するT7E1分析及びCel‐I酵素を用いた突然変異検出分析または標的化ディープシーケンシング(targeted deep sequencing)を行うことによる、請求項6に記載の方法。
- 前記非標的位置は、標的位置と一個以上のヌクレオチド不一致を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記非標的位置は標的位置と1〜6個のヌクレオチド不一致を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記(c)ステップは、切断された各々の位置に下記式を適用して、切断点数を算出して行う請求項1に記載のプログラマブルヌクレアーゼの非標的位置を検出する方法。
- 前記式でC値が100として、算出された点数が25,000点以上である場合、非標的位置であると判断するステップをさらに含む、請求項10に記載の方法。
- 前記プログラマブルヌクレアーゼは2個以上の標的に対するプログラマブルヌクレアーゼを混合したものである、請求項1に記載の方法。
- 前記プログラマブルヌクレアーゼは2〜100個の標的に対するプログラマブルヌクレアーゼを混合したものである、請求項1に記載の方法。
- 標的位置との編集距離(edit distance)により、非標的位置を分類するステップをさらに含む、請求項12に記載の方法。
- 前記プログラマブルヌクレアーゼは、メガヌクレアーゼ(meganuclease)、ZFN(zinc finger nuclease)、TALEN(transcription activator‐like effector nuclease)、RGEN(RNA‐guided engineered nuclease)、及びCpf1からなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記RGENは、標的遺伝子の特定配列に特異的に結合するガイドRNA及びCasタンパク質を含む、請求項15に記載の方法。
- 前記ガイドRNAは、オリゴヌクレオチド二本鎖またはプラスミド鋳型から転写されたものである、請求項16に記載の方法。
- 前記ガイドRNAは、crRNA(CRISPR RNA)及びtracrRNAを含む二重RNA(dualRNA)または一本鎖ガイドRNAの形態のものである、請求項16に記載の方法。
- 前記Casタンパク質はCas9タンパク質またはこれの変異体である、請求項16に記載の方法。
- 前記Casタンパク質は、ストレプトコッカス(Streptococcus)属、ナイセリア(Neisseria)属、パスツレラ(Pasteurella)属、フランシセラ(Francisella)属及びカンピロバクター(Campylobacter)属からなる群より選択される一つの由来である、請求項16に記載の方法。
- 前記メガヌクレアーゼは、I‐SceI、I‐CeuI、PI‐PspI及びPI‐SceIからなる群より選択される、請求項15に記載の方法。
- 前記Cpf1は、カンジダタスパセイバックター(Candidatus Paceibacter)、ラクノスピラ(Lachnospira)属、ブチリビブリオ(Butyrivibrio)属、ペレグリニバクテリア(Peregrinibacteria)、アシダミノコッカス(Acidominococcus)属、ポルフィロモナス(Porphyromonas)属、プレボテラ(Prevotella)属、フランシセラ(Francisella)属、カンジダタスメタノプラズマ(Candidatus Methanoplasma)及びユーバクテリウム(Eubacterium)属からなる群より選択される一つの由来である、請求項15に記載の方法。
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