JPH0925298A - 水溶性ポリマーで修飾したコンセンサスインターフェロン - Google Patents
水溶性ポリマーで修飾したコンセンサスインターフェロンInfo
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Abstract
定性を増加させる。 【解決手段】 コンセンサスインターフェロンを水溶性
ポリマーで修飾する。
Description
範な技術分野に関し、さらに詳しくは、タンパク質また
はその類似体に対する水溶性ポリマーの結合に関する
(「タンパク質」という用語は本明細書で使用する場
合、特に断わらない限り「ポリペプチド」またはペプチ
ドと同じ意味である)。また本発明は、タンパク質また
はその類似体のN末端を修飾する新規な方法およびその
結果得られる組成物に関する。別の態様で、本発明は新
規なN末端化学修飾G−CSF組成物および関連する製
造法に関する。また本発明は化学的に修飾された共働性
インターフェロン(consensus interf
eron)に関する。
質は大部分が、組換えDNA法が広く進歩した結果、適
切な形態で充分な量を現在入手することができる。組換
えタンパク質が入手可能になったので、タンパク質の製
造と化学修飾が進歩している。このような修飾を行う目
的の一つはタンパク質の保護である。
タンパク質の骨格自体と物理的に接触するのを有効に遮
断することができその結果分解が防止される。追加の利
点としては、特定の条件下で、治療用タンパク質の安定
性と循環時間を増大しかつ免疫原性を減少させることが
挙げられる。タンパク質の修飾と融合タンパク質を説明
する総説の文献はFrancis、Focus on
Growth Factors、3巻、4〜10頁、1
992年5月(英国、ロンドンN20、オールド、フラ
イアン・バーネット・レーン、マウンビュー・コート所
在、Mediscript社発行)である。
は、治療用タンパク質産物を製造するのに用いられてい
る化学薬剤部分の一つである[「PEG化する(peg
ylate)」という動詞は少なくとも一つのPEG分
子を結合させることを意味する]。例えば、Adage
nすなわちアデノシンデアミナーゼのPEG化製剤は重
篤な合併型免疫不全症を治療することが証明されてい
る;PEG化スーパーオキシドジスムターゼは頭部外傷
を治療するための臨床試験が行われている;PEG化α
−インターフェロンは肝炎を治療するための第1相臨床
試験で試験されている;PEG化グルコセレブロシダー
ゼとPEGヘモグロビンは前臨床試験(preclin
ical testing)中であることが報告されて
いる。ポリエチレングリコールを結合すると、タンパク
質分解を起こさないよう防御することが報告されており
(Sadaら、J.Fermentation Bio
engineering、71巻、137〜139頁、
1991年)そして特定のポリエチレングリコール部分
を結合する方法も利用できる(1979年12月18日
付け発行のDavisらの米国特許第4,179,33
7号「Non−Immunogenic Polype
ptides」;および1977年1月11日付け発行
のRoyerの米国特許第4,002,531号「Mo
difyingenzymeswith Polyet
hylene Glycol andProductP
roduced Thereby」参照。総説について
は、J.S.HolcerbergおよびJ.Robe
rts編集「Enzymes as Drugs」 3
67〜383頁、1981年のAbuchowskiら
の報告参照)。
れている。すなわち、エチレングリコール/プロピレン
グリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロー
ス、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニル
ピロリドン、ポリ−1,3−ジオキソラン、ポリ−1,
3,6−トリオキサン、エチレン/無水マレイン酸コポ
リマー、ポリアミノ酸類(ホモポリマーまたはランダム
コポリマー)などである。
をタンパク質に結合するのに各種の方法が用いられてい
る。一般にポリエチレングリコール分子は、タンパク質
に見られる反応性基を通じてタンパク質に結合される。
例えばリシン残基またはN末端のアミノ基などのアミノ
基は上記の結合を行うのに便利である。例えばRoye
r(上記米国特許第4,002,531号)は、ポリエ
チレングリコール分子を酵素に結合するのに還元的アル
キル化反応を用いたと述べている。1993年4月28
日付けで発行されたWrightのヨーロッパ特許第0
539167号「Peg Imidates and
Protein DerivatesThereof」
には、遊離アミノ基を有するペプチドと有機化合物は、
PEGの直接的誘導体(immediate deri
vative)または類縁の水溶性有機ポリマーで修飾
されることが記載されている。1990年2月27日付
けで発行されたShawの米国特許第4,904,58
4号には、ポリエチレングリコール分子を反応性アミン
基を通じて結合するためタンパク質中のリシン残基の数
を改変することが記載されている。
は顆粒球コロニー刺激因子すなわち「G−CSF」であ
る。G−CSFは好中性顆粒球の迅速な増殖と血流中へ
の放出を誘発するので、感染と戦う治療効果がある。
ヨーロッパ特許第0401384号「Chemical
ly ModifiedGranulocyte Co
lony Stimulating Factor」に
は、ポリエチレングリコール分子が結合されるG−CS
Fを製造する場合の材料と方法が記載されている。
年3月4日付けで公表されたヨーロッパ特許第0473
268号「Continuous Release P
harmaceutical Composition
s Comprisinga Polypeptide
Covalently ConjugatedTo
A Water Soluble Polymer」に
報告されており、その明細書には、ポリエチレングリコ
ールのような水溶性粒子ポリマーに共有結合させた各種
G−CSFと誘導体の使用が述べられている。
修飾ポリペプチドは1989年10月4日付けで公表さ
れたヨーロッパ特許第0335423号に報告されてい
る。
ッパ特許第0442724号「Modified hI
L−6」(同時係属中のアメリカ特許出願第07/63
2,070号参照)はIL−6に付加されたポリエチレ
ングリコール分子を開示している。
ーロッパ特許第0154316号は、リンホカインと、
ポリエチレングリコールのアルデヒドとの反応を報告し
ている。
法は結合基として作用する部分を用いて行われる。しか
しこのような部分は抗原性である。結合基を用いないト
レシルクロリド法(Tresyl chloride
method)を利用できるが、トレシルクロリドを使
用すると有毒な副生物を生成することがあるので、この
方法は治療用製品を製造するのに利用することは難しい
(Ahern.、T.およびManning、M.C.
編集「Stability of protein p
harmaceuticals:in vivo pa
thwaysof degradation and
strategies for protein st
abilization」Plenum社、米国ニュー
ヨーク1991年のFrancisらの報告およびFi
sherら編集「Separations Using
Aqueous Phase Systems、Ap
plications In Cell Biolog
y and Biotechnology」Plenu
mPress社、米国ニューヨーク州ニューヨーク、1
989年の211〜213頁のDelgadoらの論文
「Coupling of PEG to Prote
in By Activation With Tre
syl Chloride、Applications
In Immunoaffinity Cell P
reparation」参照)。
e Chem.、5巻、133〜140頁、1994年
は、還元的アルキル化反応で行う、CD4免疫アドヘジ
ン(immunoadhesin)のモノメトキシポリ
(エチレングリコール)アルデヒドによる修飾を報告し
ている。その著者らは、CD4−Igの50%が、PE
G化度を制御できる条件下でMePEGで修飾されたと
報告している(上記文献の137頁)。またこれらの著
者は、修飾されたCD4−Igの(タンパク質gp12
0に対する)生体外での結合能はMePEG化度に相関
する比率で低下すると報告している(上記文献参照)。
およびタンパク質基質(インスリン)のC末端カルボキ
シル基に対するリンカー基カルボヒドラジドの選択的結
合を報告するRoseら、Bioconjugate
Chemistry、2巻、154〜159頁1991
年も参照)。
現在の一般的な技術水準では、G−CSFのようなタン
パク質のN末端に水溶性ポリマーを選択的に結合させる
ことはできない。むしろ、現在の方法では、例えばリシ
ン側基のような反応性基(タンパク質内のどこに位置し
ているかにかかわらず)またはN末端に非選択的に結合
する。そのため不均一な混合物が生成する。例えば、P
EG化G−CSF分子の場合、いくつかの分子は、他の
分子と異なる数のポリエチレングリコール部分を有して
いる。例えば、5個のリシン残基を有するタンパク質分
子が上記の方法で反応させると、ある分子は6個のポリ
エチレングリコール部分を有し、またある分子は5個、
またある分子は4個、またある分子は3個、またある分
子は2個、またある分子は1個のPEG部分を有し、ま
たある分子はPEG部分をもっていない。そして、いく
つかのポリエチレングリコール部分を有する分子におい
て、そのポリエチレングリコール部分は、異なる分子と
同じ位置に結合していないこともある。
製品を開発する場合不利である。このような開発を行う
場合、生物活性を予知できることが重要である。例え
ば、スーパーオキシドジスムターゼとポリエチレングリ
コールの非選択的結合の場合、得られる修飾酵素のいく
つかの画分は全く不活性であったと報告されている
(P.McGoffら、Chem.Pharm.Bul
l.、36巻、3079〜3091頁、1988年)。
治療用のタンパク質がロット毎に組成が異なる場合、上
記の予知を得ることができない。ポリエチレングリコー
ル部分のいくつかは、ある位置では他の位置の場合と同
様に安定に結合できないので、このようなPEG部分は
タンパク質から解離することになる。勿論、このような
PEG部分がランダムに結合し、したがってランダムに
解離する場合、治療用タンパク質の薬物動態を正確に予
知することはできない。消費者からみれば、その循環時
間はロット毎に変動するので投与量が不正確になる。メ
ーカーから見ると、治療用タンパク質を販売するための
法律上の承認を得るのに複雑さが加わる。その上に、上
記の方法は、(タンパク質とポリマーの間に)結合部分
なしでは選択的N末端化学修飾を行えない。結合部分を
用いると、抗原性があるかもしれないので不利である。
れたタンパク質とその類似体が得られる方法が要望され
ている。そのタンパク質としてはG−CSFや共働性イ
ンターフェロンなどがあるがこれら2種の化学修飾され
たタンパク質を以下に例示する。本発明はこの要望をい
くつかの態様で検討するものである。
製剤とその製造方法に関する。予想外のことであった
が、G−CSFのN末端を化学修飾すると、この分子の
別の位置に一つの化学修飾がなされている他のG−CS
F種にはみられない、安定性の利点を示した。またも予
想外であったが、N末端を化学修飾されたG−CSFを
製造する本発明の方法で、還元的アルキル化反応を用い
て、N末端を選択的に修飾する条件を提供することがで
き、かつこの方法はG−CSFのみならず他のタンパク
質(またはその類似体)に広く適用できることが見出さ
れたのである。また驚くべきことであるが、還元的アル
キル化反応を用いると、最終生成物(水溶性ポリマーと
のアミン結合を有するタンパク質)が、アミド結合を有
する同じポリマー/タンパク質結合体よりはるかに安定
であることが見出された。このように修飾された他の一
つのタンパク質(下記実施例で説明する)は共働性イン
ターフェロンである。したがって、一層詳細に以下に説
明するように、本発明には、特定のタンパク質の特定の
修飾のみならずタンパク質(またはその類似体)の化学
修飾に関するいくつかの態様がある。
飾されたG−CSF(またはその類似体)の実質的に均
質な製剤および関連する方法に関する。下記の一実施例
は、N末端モノPEG化G−CSFが他のタイプのモノ
PEG化G−CSFより安定であることを例証してい
る。さらに、G−CSF分子のN末端はポリエチレング
リコールとの反応で利用し易いので、高比率のN末端が
PEG化されるためこの分子種には加工面での利点があ
る。
体のN末端残基のα−アミノ基を選択的に活性化して、
そのN末端に水溶性ポリマー部分を選択的に結合させる
一つのタイプの還元的アルキル化反応に関する。この方
法によって、(ポリエチレングリコールが使用される場
合)タンパク質部分に直接結合されたポリエチレングリ
コール部分を有するPEG化タンパク質分子の製剤のみ
ならず、ポリマー/タンパク質結合分子の実質的に均質
な製剤が提供される。G−CSFと共働性インターフェ
ロンの場合についてこの方法を以下に説明するが、これ
らは本発明の追加の態様を提供する。
質的に均質な調製物およびその製造方法に関する。
修飾G−CSF組成物およびその製造方法に関する。
造方法および本発明の還元的アルキル化方法の両方)
は、モノポリマー/蛋白質結合体の実質的に均質な混合
物を与えるものである。本明細書で使用する「実質的に
均質な」という表現は、観察されるポリマー/蛋白質結
合体分子のみが1つのポリマー部分を有するものである
ことを指す。調製物は未反応の(即ちポリマー部分を欠
く)蛋白を含有してよい。ペプチド地図作成およびN末
端配列決定により確認されるとおり、後述する1つの実
施例は少なくとも90%のモノポリマー/蛋白質結合体
および最大10%の未反応蛋白質であるような調製物を
与えるものである。好ましくは、N末端モノPEG化物
質は、調製物の少なくとも95%であり(後述する実施
例に示す)、そして最も好ましくは、N末端モノPEG
化物質は調製物の99%以上である。モノポリマー/蛋
白質結合体は生物学的活性を有する。ここに提供される
本発明の「実質的に均質な」N末端PEG化G−CSF
調製物は、例えばロット毎の薬物動態を推測することが
臨床適用上容易であること等のような、均質な調製物の
利点を示すのに十分均質であるものである。
製することを選択してもよく、本発明により提供される
利点は、混合物中に含有されるモノポリマー/蛋白質結
合体の比率を選択してよい点である。即ち、所望によ
り、種々の数の連結ポリマー部分(即ち、ジ−、トリ
−、テトラ−等)を有する種々の蛋白の混合物を調製
し、本発明の方法で調製したモノポリマー/蛋白質結合
体物質と組合わせ、そして、所定の比率のモノポリマー
/蛋白質結合体を得てよい。
用蛋白であるG−CSFを用いる実施例を以下に記載す
る。一般的に、本発明の実施に用いるG−CSFは哺乳
類動物から単離された形態であるか、または、化学合成
方法の生成物であるか、または、ゲノムまたはcDNA
クローニングまたはDNA合成により得られる外来性D
NA配列の原核生物または真核生物の宿主発現による産
物であってよい。適当な原核生物宿主には、種々の細菌
(例えばE.coli)が包含され;適当な真核生物宿
主には酵母(例えばS.cerevisiae)および
哺乳類細胞(例えばチャイニーズハムスター卵巣細胞、
サル細胞)が包含される。使用する宿主に応じて、G−
CSF発現産物は、哺乳類またはその他の真核生物炭水
化物によりグルコシル化されていてもよいし、または非
グリコシル化形態であってもよい。G−CSF発現産物
はまた(−1位に)初期メチオニンアミノ酸残基を有し
てよい。とりわけE.coli由来の組み換えG−CS
Fが特に商業的な現実性が最も大きいという理由から好
ましいものの、本発明は上記した形態のG−CSFのい
ずれかおよび全ての使用を意図したものである。
性を有することが報告されており、これらはまた、例え
ば、1つ以上のポリエチレングリコール分子を付加する
ことにより、化学修飾してよい。G−CSF類似体は米
国特許第4,810,643号に報告されている。生物
学的活性を有することが報告されているその他のG−C
SF類似体の具体例は、開示された各類似体の活性に関
する記載はないが、例えばAU−A−76380/91
号、EP 0 459 630号、EP 0272 7
03号、EP 0 473 268号およびEP 0
335 423号に記載されている。またAU−A−1
0948/92、PCT US94/00913号およ
びEP 0 243 153号も参照されたい。
びその類似体は、N末端αアミノ基を選択的に化学修飾
するための本明細書に記載した化学修飾方法を実施し、
得られた生成物が所望の生物学的特性を有するかどうか
を、本明細書に記載した生物活性検定法などにより調べ
ることにより確認してよい。当然ながら、非ヒト哺乳類
を治療する際に所望により、組み換えネズミ、ウシ、イ
ヌG−CSF等のような組み換え非ヒトG−CSFを用
いてよい。例えばPCT WO 9105798号およ
びPCT WO 8910932号を参照されたい。
飾G−CSF類似体組成物を包含する。前記したとお
り、G−CSF類似体には、アミノ酸の付加、欠失およ
び/または置換を有するようなものが包含される(後記
する実施例1のG−CSFアミノ酸配列と比較され
る)。N末端PEG化された場合に好中球の生産を選択
的に刺激するような機能を有すると予測されるようなG
−CSF類似体は、G−CSF受容体への結合のために
必要ではないN末端を有するものである。Hill等、
PNAS−USA 90:5167−5171(199
3)およびPCTUS94/00913参照。
ら選択してよい。(本明細書に記載する還元的アルキル
化のためには、ポリマーは単一の反応性アルデヒドを有
さなければならない。)選択されたポリマーは、それに
結合する蛋白が生理学的環境のような水性の環境で沈殿
しないように、水溶性でなければならない。還元的アル
キル化のためには、本発明の方法に関して記載したとお
り重合度を制御できるように、選択されたポリマーは単
一の反応性アルデヒドを有さなければならない。ポリマ
ーは分枝鎖または非分枝鎖であってよい。好ましくは、
最終製品調製物の治療上の使用のためには、ポリマーは
薬学的に許容されるものである。当業者は、ポリマー/
蛋白質結合体を治療に用いるのかどうかという判断、そ
して、そうであれば、所望の用量、循環時間、蛋白分解
に対する耐性およびその他の判断に基づき、所望の重合
体を選択できる。G−CSFについては、これらは本明
細書に記載した検定方法を用いて確認してよく、そし
て、当業者は、その他の治療用蛋白のための適切な検定
方法を選択しなければならない。水溶性ポリマーは例え
ば、上記したもの(発明の背景参照)、および、デキス
トランまたはポリ(N−ビニルピロリドン)、ポリエチ
レングリコール、ポリプロピレングリコールホモポリマ
ー、ポリプロピレンオキシド/エチレンオキシド共重合
体、ポリオキシエチル化ポリオールおよびポリビニルア
ルコールよりなる群から選択してよい。
ては、ポリマーはどのような分子量のものでもよく、そ
して、分枝鎖または非分枝鎖であってよい。ポリエチレ
ングリコールについては、好ましい分子量は、約2kD
a〜約100kDaである(「約」という表現は、ポリ
エチレングリコールの調製においては、記載した分子量
よりも、一部の分子は高分子量、一部は低分子量になる
ことを指す)。後述する実施例1および2は、PEG
6000を使用しているが、これは精製が容易であり適
当なモデル系が得られることから選択したものである。
所望の治療特性(例えば所望の徐放性持続時間、作用、
場合により生物学的活性、取り扱いの容易さ、抗原性の
程度または非抗原性、および、治療用蛋白または類似体
に対するポリエチレングリコールのその他の知られた作
用)に応じて、その他の大きさのものも使用しうる。
ングリコール部分およびG−CSF部分を有するN末端
モノPEG化G−CSFである。本発明の組成物を得る
ためには、種々のポリエチレングリコール分子(分子
量、分枝鎖状態等による)、反応混合物中のG−CSF
蛋白分子に対するポリエチレングリコール分子の比率、
実施するPEG化反応の種類、選択されたN末端PEG
化G−CSFを得るための方法、および使用するG−C
SFの種類を適宜選択してよい。更に、本発明の組成物
および方法は、医薬組成物の製造、治療および薬剤製造
の方法を包含する。
分子の比率は、反応混合物中のその濃度の変化に応じて
変化する。一般的に、最適な比率(未反応の蛋白または
ポリマーが過剰に存在しないという反応の効率の点で)
は選択されたポリエチレングリコールの分子量により決
定される。更に、本発明の1つの実施例では非特異的P
EG化およびN末端モノPEG化種の後の精製を行なう
ため、比率は使用できる反応性の基の数により異なる
(典型的にはαまたはεアミノ基)。本明細書に記載し
た1つの実施例では、一般的にモノPEG化物質を得る
ために蛋白:PEG分子のかなり低い反応比を用いてい
る(蛋白分子当たり1.5PEG分子)。
は、PEG化の方法は前記したような種々の方法から選
択してよく、または、後述する実施例2に記載するとお
り本発明の還元的アルキル化を用いてよい。ポリエチレ
ングリコール部分と蛋白部分との間に連結基を用いない
方法は、Francis等の蛋白性薬剤の安定性:分解
のin vivo経路および蛋白安定化方法(Stab
ility of protein pharmace
uticals: in vivo pathways
of degradation and strat
egies for protein stabili
zation)、(Eds。Ahern.、T and
Mannning、 M.C)Plenum、New
York、1991)に記載されている。あるいは、
Delgado等の「トレシルクロライドを用いた活性
化による蛋白へのPEGのカップリング、免疫親和性細
胞調製への応用(Coupling of PEG t
o Protein ByActivation Wi
th Tresyl Chloride,Appli
cationsIn Immunoaffinity
Cell Preparation)」、Fisher
等編、水層系を用いた分離、細胞生物学およびバイオテ
クノロジーにおける応用、Plenum Press、
N.Y.N.Y.、1989、pp.211−213は
トレシルクロライドを使用しており、このためポリエチ
レングリコール部分と蛋白部分との間には連結基が存在
しない。この方法は、トレシルクロライドの使用により
毒性副産物が形成されるため、治療用製品の製造のため
に使用するのは困難である。本発明の実施例の1つでは
カルボキシメチルメトキシポリエチレングリコールのN
−ヒドロキシスクシンイミジルエステルを使用してい
る。後に詳細に記載するとおり、別の実施例では本発明
の還元的アルキル化方法を用いている。
めの方法(即ち必要に応じてこの部分を別のモノPEG
化部分から分離すること)は、PEG化G−CSF分子
の集団からN末端PEG化物質を精製することにより行
なうことができる。例えば、下記に示す例ではPEG化
G−CSFをまずイオン交換クロマトグラフィーにより
分離してモノPEG化物質の電荷特性を有する物質を得
て(同じ見掛け上の電荷を有する別の多PEG化物質が
存在する場合がある)、そして次に、モノPEG化物質
をサイズ排除クロマトグラフィーにより分離する。この
方法では、N末端モノPEG化G−CSFが別のモノP
EG化種並びに別の多PEG化種から分離される。その
他の方法も報告されている。例えば、1990年5月3
日に公開されたPCT WO 90/04606号はP
EG含有水性2相系中でPEG/蛋白付加物を分配する
ことを包含するPEG−蛋白付加物の混合物の分画方法
を報告している。
修飾蛋白(または類似体)を選択的に得るための方法を
提供する。特定の蛋白における誘導体形成のために使用
できる種々のタイプの第一アミノ基の反応性の差(リジ
ンvsN末端)を利用した還元的アルキル化による蛋白
修飾方法を以下に記載する。適切な反応条件のもとでカ
ルボニル基含有ポリマーを用いてN末端において蛋白の
実質的に選択的な誘導体形成を行なうことができる。反
応は蛋白のリジン残基のεアミノ基とN末端残基のαア
ミノ基とのpKaの差を利用することができるようなp
Hで行なう。このような選択的誘導体形成により、水溶
性ポリマーの蛋白質への結合が制御でき、ポリマーとの
結合体形成は蛋白のN末端で主に起り、リジン側鎖アミ
ノ基のようなその他の反応性の基の修飾はほとんど起ら
ない。
学修飾方法を用いる場合に必要とされるような更に進ん
だ精製を行なうことなく、モノポリマー/蛋白結合体分
子の実質的に均質な調製物を製造するための方法を提供
する。また、アミン結合を有する生成物は、意外にも、
アミド結合を用いて調製した生成物よりも安定であり、
これは後に記載する凝集試験で明らかにされる。特に、
ポリエチレングリコールを用いる場合は、本発明はま
た、抗原性を有する可能性のあるような結合基を有さ
ず、そして、蛋白部分に直接カップリングするポリエチ
レングリコール部分を有するN末端PEG化蛋白を毒性
副生成物を生じることなく、提供する。
明できる(還元剤の例としてシアノホウ水素化ナトリウ
ムを示した)。
基1つ以上を有する蛋白部分を、水溶性ポリマー部分
と、還元的アルキル化条件下、上記蛋白部分のアミノ末
端でαアミノ基を選択的に活性化させるのに適するpH
で反応させることにより、上記水溶性ポリマーを上記α
アミノ基に選択的に結合すること;および(b)反応生
成物を得ること、を包含するポリマー/蛋白結合体の製
造方法である。場合により、そして治療用製品のために
は好ましくは反応生成物を未反応部分から分離する。
ルキル化により、アミノ末端にαアミノ基を有するいか
なる蛋白にも重合体を選択的に結合することが可能であ
り、そしてモノポリマー/蛋白結合体の実質的に均質な
調製物が得られる点である。「モノポリマー/蛋白結合
体」という用語は、本明細書においては、蛋白部分に結
合した単一のポリマー部分を有する組成物を指す(更
に、本明細書に記載する蛋白類似体を用いた結合体も包
含される)。モノポリマー/蛋白結合体はN末端に位置
するポリマー部分を有するが、リジンの場合のようなア
ミノ側鎖基には有さない。調製物は、好ましくは80%
を超えるモノポリマー/蛋白結合体、更に好ましくは9
5%を超えるモノポリマー/蛋白結合体である。
均質な集団を得るためには、反応条件は、所望の蛋白の
N末端への水溶性ポリマー部分の選択的結合を可能にす
るようなものである。このような反応条件は一般的に、
リジンアミノ基とN末端α−アミノ基におけるpKaの
差を与える(pKはアミノ基の50%がプロトン化さ
れ、50%がされないようなpHである)。一般的に、
N末端のα−アミノ基の修飾を最適なものとするには、
異なる蛋白に対し、異なるpHを用いることができる。
率にも影響を及ぼす。一般的に、pHがpKより低い場
合は、蛋白に対してより大過剰のポリマーが必要である
(即ち、N末端α−アミノ基の反応性が低いほど、最適
な条件を達成するためにはより多くのポリマーが必要に
なる)。pHがpKより高い場合は、ポリマー:蛋白の
比はそれほど大きくなる必要は無い(即ち、より多くの
反応性の基が使用できるため、必要なポリマー分子数は
少なくなる)。
である。一般的に、ポリマーの分子量が高いほど、蛋白
に結合するポリマー分子の数は少なくなる。同様に、こ
れらのパラメーターを最適にする際には、ポリマーの分
枝鎖状態を考慮しなければならない。一般的に、分子量
が高いほど(または分枝鎖が多いほど)、ポリマー:蛋
白の比は大きくなる。
元剤は水溶液中で安定であることが必要であり、好まし
くは、還元的アルキル化の最初の工程で形成されるシッ
フ塩基のみを還元することができるものである。好まし
い還元剤は、ナトリウムボロハイドライド、ナトリウム
シアノボロハイドライド、ホウ酸ジメチルアミン、ホウ
酸トリメチルアミンおよびホウ酸ピリジンよりなる群か
ら選択される。後述する実施例ではナトリウムシアノボ
ロハイドライドを用いた。
ってよく、そして、蛋白にカップリングするための単一
の反応性アルデヒドを有するものでなければならない。
ポリエチレングリコールについては、G−CSFへのカ
ップリングにはPEG 6000、コンセンサスインタ
ーフェロンに対してはPEG 12000の使用を以下
に記載している。ただし、G−CSFの場合は、PEG
12000、20000および25000も本発明の
方法で良好に使用される。ポリエチレングリコールプロ
ピオンアルデヒド(例えば米国特許第5,252,71
4号参照)は水中の安定性の点で好都合である。
−アミノ基を有するいかなる蛋白またはその類似体にも
広範に適用できる。例えば、細菌内で発現された外来性
DNA配列の産物であるような蛋白は、細菌による発現
の結果として、α−アミノ基を有するN末端メチオニル
残基を有している。前記したとおり、ペプチド、並びに
ペプチド類似物およびその他の修飾蛋白も包含される。
上記したG−CSF類似体のような蛋白類似体、および
非天然コンセンサスインターフェロンも本発明の方法に
適している。
のためには、本明細書に記載したいずれのG−CSFま
たは類似体も使用できる(例えば上記したもの)。後述
する実施例では、174アミノ酸および余分にN末端メ
チオニル残基を有する細菌生産組み換えG−CSFを用
いる。本明細書に記載するとおり、化学修飾は本明細書
に記載するいずれの水溶性ポリマーを用いて行ってもよ
く、実施例ではポリエチレングリコールの使用を記載し
た。
実施例で使用されるもう1つの蛋白である。N末端モノ
PEG化のための本発明の還元的アルキル化方法を用い
た化学修飾コンセンサスインターフェロンの調製を以下
に記載する。即ち、本発明の別の態様は、これらの調製
に関する。本発明においては、「コンセンサスインター
フェロン」または「IFN−con」と記載するコンセ
ンサスヒト白血球インターフェロンは、非天然のポリペ
プチドであり、全ての天然のヒト白血球インターフェロ
ンサブタイプ配列に共通のアミノ酸残基を主に含んでお
り、全てのサブタイプに共通なアミノ酸を含まない1つ
以上の位置に、その位置に主に生じるアミノ酸であって
且つ、少なくとも1つの天然のサブタイプの該位置に存
在しないアミノ酸残基を有することがないアミノ酸を含
む、ものである。IFN−conには、IFN−con
1 ,IFN−con2 およびIFN−con3 という名
称のアミノ酸配列が包含され、これらは、同一の譲受人
の米国特許第4,695,623号および4,897,
471号に開示されており、これら明細書の記載内容全
体は参考のために本明細書に組み込まれる。(米国特許
第4,897,471号および4,695,623号は
本明細書で使用していない名称「α」を使用してい
る。)IFN−conをコードするDNA配列は、上記
した特許に記載された通り、あるいは、その他の標準的
な方法で合成してよい。IFN−conポリペプチドは
好ましくは、細菌宿主、特にE.coliにトランスフ
ォームまたはトランスフェクトされた合成DNA配列の
発現産物である。即ち、IFN−conは組み換えIF
N−conである。IFN−conは好ましくはE.c
oli中で生産され、当該分野で良く知られ、そして、
一般的にはIFN−con1についてKlein等の
J.Chromatog.454:205−215(1
988)に記載された方法により精製される。精製され
たIFN−conはイソフォームの混合物を含有し、例
えば精製IFN−con1 はメチオニルIFN−co
n1 ,脱メチオニルIFN−con1 およびブロックさ
れたN末端を有する脱メチオニルIFN−con1 の混
合物を含有する(Klein等、Arc.Bioche
m.Biophys.276:531−537(199
0))。あるいは、IFN−conは特定の単離された
イソフォームを含有する。IFN−conのイソフォー
ムは当業者の知る等電点電気泳動のような方法で相互に
分離される。
ンサスインターフェロン部分がIFN−con1、IFN
−con2 およびIFN−con3 よりなる群から選択
される化学修飾コンセンサスインターフェロンである。
化学修飾は、PEGのような本明細書に記載する水溶性
ポリマーを用いて行ない、本発明の還元的アルキル化方
法を用いて選択的N末端化学修飾を行なってよい。本明
細書に記載する実施例3は、ポリエチレングリコール部
分(PEG 12000)にN末端で結合されたIFN
con1 部分を有する化学修飾IFN con1 を説明
するものである。
は、ポリエチレングリコール部分が蛋白部分に直接結合
し、別の連結基が存在せず、毒性副生成物が存在しない
ようなPEG化蛋白を提供する。実施例は本明細書に記
載するとおりG−CSFおよびコンセンサスインターフ
ェロンを含んでいる。ポリエチレングリコール部分がG
−CSF蛋白部分に直接結合しているようなPEG化G
−CSF蛋白分子の集団(N末端PEG化G−CSF分
子の集団である必要はない)を得るためには、酸性pH
を用いるか、又は用いることなく、上記還元的アルキル
化を実施してよい。
質の医薬組成物が提供される。このような医薬組成物は
注射による投与、または経口投与、肺投与、経鼻投与ま
たはその他の投与形態であってよい。一般的に、本発明
が意図するものは、本発明のモノポリマー/蛋白結合体
生成物の有効量を薬学的に許容される希釈剤、保存料、
可溶化剤、乳化剤、補助剤、および/または担体と共に
含有する医薬組成物である。このような組成物は、種々
の緩衝物質成分(例えばトリス−HCl、酢酸、リン
酸)、pHおよびイオン強度の希釈剤;洗剤および可溶
化剤(例えばTween 80、ポリソルベート 8
0)、抗酸化剤(例えばアスコルビン酸、メタ重亜硫酸
ナトリウム)、保存料(例えばチメルソール、ベンジル
アルコール)および増量剤(例えば乳糖、マンニトー
ル)のような添加物;ポリ酢酸、ポリグリコール酸等の
ような重合体化合物の粒状調製物への、または、リポソ
ームへの活性物質の配合を含む。このような組成物は、
本発明のN末端化学修飾蛋白の物理的性状、安定性、i
n vivo徐放性、およびin vivoクリアラン
ス速度に影響する。例えば、RemingtonのPh
armaceuticalScience、18版(1
990、Mack Publishing Co.、E
aston、PA 18042)の1435−1712
ページに記載されており、その内容は参考のために本明
細書に組み込まれる。
および医薬の製造方法が提供される。本発明のポリマー
/G−CSF結合体(または天然のG−CSFの造血生
物作用を有する類似体)の投与により軽減または調節さ
れる症状は、典型的には、低下した造血または免疫機
能、特に低好中球数により特徴づけられる症状である。
このような症状は、化学療法または放射線療法のような
他の目的のための治療の過程として誘発される。このよ
うな症状は、細菌、ウィルス、カビまたはその他の感染
性疾患のような感染症に起因する場合がある。例えば、
敗血症は細菌感染から生じる。あるいは、このような症
状は、重度の慢性好中球減少症または白血病のように、
遺伝的または環境的に誘発される。成人病分野では患者
は低好中球数または低好中球運動性を有するため、年齢
も重要な因子である。このような症状の一部は、Fil
grastim(r−met Hu G−CSF)、C
linical Practice、Morstyn、
G.およびT.M.Dexter、eds.、Marc
el Dekker、Inc.、N.Y.、N.Y.
(1993)、351頁に記載されている。本発明のポ
リマー/G−CSF結合体の投与により軽減または調節
されるようなその他のあまり研究されていない症状に
は、G−CSFがプラスミノーゲン活性化物質の産生を
誘発することから、血流中の脂質(またはコレステロー
ル)の低下、および特定の心臓血管症状が包含される。
これらの分野におけるG−CSF(または類似体)の作
用様式は、現時点では十分解明されていない。ポリエチ
レングリコールのような水溶性ポリマーを付加すること
は、生物活性の持続により治療過程当たりのG−CSF
注射の回数が少なくできるため、実際の患者に利益をも
たらすものである。
スインターフェロンの投与により軽減または調節される
ような症状は、コンセンサスインターフェロンが適用可
能な症状であり、細胞増殖疾患、ウィルス感染、および
多発性硬化症のような自己免疫疾患が包含される。Mc
Maus Balmer、DICP、The Anna
ls of Pharmacotherapy 24:
761−767(1990)(ガン治療における生物応
答調節剤の臨床使用:概説、第I部、インターフェロ
ン)参照。コンセンサスインターフェロンを用いた細胞
増殖疾患の治療のための方法および組成物は、1992
年4月30日公開のPCT WO 92/06707号
に記載されており、その内容は参考のために本明細書に
組み込まれる。例えば、肝炎(A、B、C、D、E)は
本発明のPEG化コンセンサスインターフェロン分子を
用いて治療可能である。後述する実施例では、in v
itroで化学修飾されたコンセンサスインターフェロ
ンは非化学修飾コンセンサスインターフェロンの生物活
性の20%を有している。
実施するに従って、種々の患者の種々の症状の治療のた
めの適切な用量に関する情報が得られ、そして、当業者
は、治療内容、投与対象の年齢および全身状態を考慮し
ながら、適切な用量を確認することが可能であろう。一
般的に、注射または注入のためには、用量は0.01μ
g/kg体重(化学修飾しない蛋白のみの質量を計算)
〜100μg/kg(同じ計算に基づく)である。
様を説明するものである。実施例1では、N末端PEG
化G−CSFの利点を(G−CSF met+174ア
ミノ酸型の)リジン−35またはリジン−41でモノP
EG化されたG−CSFと比較しながら説明する。実施
例2はN末端PEG化G−CSFにおける本発明の還元
的アルキル化を説明するものである。この方法はN末端
PEG化G−CSFの実質的に均質な調製物を与える。
実施例3はN末端PEG化コンセンサスインターフェロ
ンの本発明の還元的アルキル化を説明するものである。
−CSF”または“r−met−hu−G−CSF”と
呼ぶ)は、上述のようにSouza特許、米国特許第
4,810,643号にある方法に従って調製した。こ
の特許は参考として本明細書に組み入れる。使用したr
hG−CSFは、以下に示す(DNA配列によってコー
ドされる)アミノ酸配列をもつE.coli由来の組換
え発現産物であった(配列番号1および2):
化組成物でもあった。)或いは以下のPeg化法には、
市販のNeupogen(登録商標)を使用してもよい(このパ
ッケージに入っているものは、本明細書に参考として組
み入れる)。
M Bicine pH8.0に溶かした溶液を、平均
分子量が6000ダルトンの固体のSCM−MPEG
(カルボキシメチルメトキシポリエチレングリコールの
N−ヒドロキシスクシニミジルエステル)(Union
Carbide)に添加した。これによってrh−G
−CSFよりもSCM−MPEGが1.5モル過剰にな
った。1時間軽く攪拌した後、滅菌水で混合液を2mg
/mlに希釈し、希釈したHClによってpHを4.0
に調整した。反応は室温で起こさせた。この段階で反応
混合物は主に3形態のモノPEG化rh−G−CSFか
ら構成されており、その他、ジPEG化rh−G−CS
F、未修飾のrh−G−CSF、および反応の副産物
(N−ヒドロキシスクシニミド)が含まれていた。
製 3形態のモノPEG化rh−G−CSFは、イオン交換
クロマトグラフィによって別々に分離した。反応混合液
を、緩衝液A(20mM酢酸ナトリウム、pH4.0)
で平衡化しているPharmacia Sセファロース
FFカラム(Pharmacia XK50/30リザ
ーバ、ベッド容量440ml)に添加した(1mg蛋白
質/ml樹脂)。カラムを3カラム容量の緩衝液Aで洗
浄した。蛋白質は0〜23%の直線勾配の緩衝液B(2
0mM酢酸ナトリウム、pH4.0、1M NaCl)
を15カラム容量用いて溶出した。次に1カラム容量の
100%緩衝液Bでカラムを洗浄し、3カラム容量の緩
衝液Aで再度平衡化させた。操作全体の流速は8ml/
分に維持した。溶離剤を280nmでモニターし、5m
lの分画を収集した。モノPEG化した個々の分子種を
含む分画は、図1Aに従ってプールした。このようにプ
ールした液をYM10 76mmメンブランを使った3
50mL Amicon攪拌セルを使って濃縮した。
を分離するため、イオン交換クロマトグラフィで得たプ
ールした分画をサイズ排除クロマトグラフィにかけた。
一般に、5〜10mgが入った2〜5mlの溶液を、2
0mMの酢酸ナトリウム、pH4.0で平衡化した12
0mlのPharmacia Superdex 75
HR 16/60カラムに添加した。カラムを1.5
ml/分で100分間操作し、2mlの分画を収集し
た。溶離剤の蛋白質含有量を280nmでモニターし
た。分離されたピークの分画をプールして分析にかけ
た。以下の表は各ピークの収量比率を比較したものであ
る。
4にあるリジンは多分有意にPEG化されなかったと思
われる。
た:(1)SDS−Page(図1B)、(2)サイズ
排除クロマトグラフィHPLC(“SEC HPL
C”)(図2)、(3)ペプチドマッピング分析(図3
A、3B、3C)、(4)in vitro G−CS
Fバイオアッセイ(図4)、および(5)ハムスターを
用いたin vivo試験(図5Aおよび5B)。 N
末端にモノPEG化したG−CSFの各サンプルの組成
に関する分析結果は、95%以上がN末端にPEG化し
ており、残りは多分PEG化していない物質だろうとい
うことを実証するものである(サンプルの残りはアッセ
イの検出限界より低かったが)。3種類のモノPEG化
物質(N末端、リジン35でのPEG化、リジン41で
のPEG化)の各々について、モノPEG化の割合を調
べたところ、N末端およびリジン41は97%以上がモ
ノPEG化されており、リジン35でのPEG化物質は
これよりいくらか低かった。これは多分、アッセイ条件
において分子が不安定であることによると思われる。以
上をまとめると次の結果が得られた:
ポリエチレングリコール分子が人為的に分離される可能
性があるため、N末端シーケンシングは、下記に説明す
るとおり、ここでは定量的とはいえない。
のことを言い、蛋白質1分子当りのポリエチレングリコ
ール分子の数を推定するのに用いられる。これはSEC
HPLCデータからポリエチレングリコールの屈折率
と蛋白質の紫外線吸光度を用いて計算される。
では不安定であることに注意。
20% ISSDaiichi Pure Chemi
cals(東京)のミニゲルにおいて、コーマシーブリ
リアントブルーR−250染色剤を用いて実施された。
ゲルはImage Quantを用いた動的分子濃度計
によってスキャンした。
番号1(左から数えて)には蛋白質の分子量標準(No
vex Mark 12分子量標準)が入っていた。レ
ーン2には3μgのrh−G−CSF標準が含まれてい
る。レーン3には10μgのSCM−PEG−GCSF
反応混合液が入っている。レーン4には10μgのN末
端モノPEG化G−CSFが含まれている。レーン5に
はN末端のメチオニンからの35番目の残基に見出され
たリジンにPEG化したモノPEG化G−CSFが10
μg入っている。レーン6にはN末端のメチオニンから
41番目の残基に見出されたリジンにPEG化したモノ
PEG化G−CSFが10μg含まれている。図から分
かるように、N末端にモノPEG化した物質が含まれて
いるレーン3はバンドが一つである。
体クロマトグラフィー。SEC−HPLCはWater
sのHPLCシステム、Biosep SEC 300
0カラム、100mMのリン酸ナトリウム、pH6.9
を用いて、1ml/分の流速で20分間実施した。シグ
ナルは280nmでモニターした。
ノPEG化したrh−G−CSFを含むライン“C”は
ピークが1個であり、ライン“D”(リジン35にモノ
PEG化した物質)および“E”(リジン41にモノP
EG化した物質)もやはりピークが1個であった。これ
はモノPEG化G−CSFから分離した分画は純度が実
質的に高いことを示している。
た。“モノ−PEG−1”、“モノ−PEG−2”、
“モノ−PEG−3”と呼ばれる3つのサンプルを分析
した。 (a)還元アルキル化。モノ−PEG G−CSFの5
00μgのアリコートを高速真空乾燥し、6Mの塩酸グ
アニジンと1mMのEDTAを含む0.3MのTris
−HCl(pH8.4)で濃度1mg/950μlに再
構成した。次にサンプルにヨード酢酸を加えてS−カル
ボキシメチル化し、37℃で20分間インキュベートし
た。次にSephadex G−25 Quick S
pin Protein カラムを用いてサンプルを脱
塩し、緩衝液を交換した。脱塩しバッファ交換した後、
緩衝液を追加することによってサンプルの濃度を0.5
mg/mlに調整した。(b)エンドプロテイナーゼ
SV8消化。サンプルはSV8を用いて25℃で26時
間消化した(酵素と基質の比は1:25)。(c)HP
LC ペプチドマッピング。蛋白質消化物をVydac
C4カラム(4.6×200mm、粒子サイズ5μ、
孔径300オングストローム)に注入し、0.1%TF
A中アセトニトリルの直線勾配を用いて、ペプチドをH
PLCによってマッピングした。ペプチドを手で収集
し、配列分析のために高速真空乾燥した。 結果:参照標準と比較して、(i)(図3A)“モノ−
PEG−1”(N末端モノPEG化物質)の場合、ピー
クは57.3分で消え、77.5分で新しいピークが現
れた;(ii)(図3B)“モノ−PEG−2”(リジ
ン35にPEG化した物質)の場合、リテンションタイ
ム30.3分のペプチドのピーク高さが低下し、66.
3分に新しいピークが溶出された;(iii)(図3
C)“モノ−PEG−3”(リジン41にPEG化した
物質)の場合、リテンションタイム30.3分のピーク
はなく、66.4分に新しいピークが現れた。これらの
ペプチドはサンプルマップでの唯一の有意な差であっ
た。わずかな消化の差のために、86.1分のペプチド
の一方の側にいくらか、小さい不完全な切断があった。
(d)N末端の配列分析。上記のマップに現れた“新し
い”ペプチドの各々を、同定のためN末端を配列分析し
た。乾燥したペプチドを0.1% TFAで再構成し、
ABI蛋白質シーケンサで配列決定した。“モノ−PE
G−1”(N末端にPEG化した物質)の場合、“新し
い”ピーク(77.5分)の60%が10サイクルで配
列決定された。初期収率は5%未満であったが、これは
N末端のメチオニル残基がポリエチレングリコール分子
によってブロックされていることを示している。この最
初のペプチドは初期収率が0%となるはずであったが、
収率が5%未満であったのは、配列分析中にN末端のメ
チオニルからポリエチレングリコールが脱着した結果か
もしれない。検出された配列は、N末端ペプチドのもの
でM−T−P−L−G−P−A−S−Sであった。“モ
ノ−PEG−2”(リジン35にPEG化した物質)の
場合、総ピーク体積の80%が66.3分のピークに集
まり、9サイクルで配列決定された。リジン35の回収
率は有意に低かったが、これは位置35でのPEG化を
示している。リジン41の回収率はその他の残基と同じ
くらいで、この位置では修飾が行われていないことを示
唆していた。30.3分のペプチドは、標準参照マップ
の対応するピークと比べて、ピーク高さが低かった。3
0.3分のペプチドは、対応するペプチドのピーク面積
の57.5%しかなかった。この分子種で検出された配
列はK−L−C−A−T−Y−K−Lであった。“モノ
−PEG−3”(リジン41にPEG化した物質)の場
合、66.4分に溶出したペプチドについて収集された
総ピーク体積の80%が9サイクルで配列決定された。
検出された配列はK−L−C−A−T−Y−K−Lであ
り、リジン残基35および41を含んでいた。リジン3
5の回収率は他の残基の回収率と同じであった。リジン
41の回収率は有意に低く、これは位置41でのPEG
化を示していた。結果:“モノ−PEG−1”はN末端
にモノPEG化された物質である;“モノ−PEG−
2”はリジン35に一部PEG化された物質である;ま
た“モノ−PEG−3”はリジン41にPEG化された
物質である。参照標準(非PEG化G−CSF)とGC
SFモノPEG化1、2、3のペプチドマップを比較す
ることによって、“モノ−PEG−2”(リジン35)
と“モノ−PEG−3”(リジン41)のマップは、N
末端ペプチドよりもピーク高さがわずかに低いことが分
かった。これはリジン35およびリジン41物質に少量
のN末端PEG化物質が含まれていること、またはN末
端のメチオニンのPEG化率が低いことを示唆してい
る。
あった。図4はin vitroアッセイの結果を表し
ている。記載の通り、N末端モノPEG化された物質の
活性は、未修飾rhG−CSFの活性の68%であっ
た。
オアッセイはマウス32D細胞のG−CSF依存クロー
ンを利用する細胞分裂アッセイである。細胞を5%のF
BSおよび20ng/mlのrhG−CSFが入ったI
scoves培地に入れて維持した。サンプルを加える
前に、rhG−CSFを含まない成長培地で細胞を2回
洗浄した。48から0.5ng/ml(4800〜50
IU/mlに相当)までの長い12ポイントのrhG−
CSF標準曲線を作製した。標準曲線の直線部分(10
00〜3000IU/ml)に入ると予想される4つの
希釈液を各サンプルについて調製し、それぞれ3回ずつ
ランした。これらの物質の見かけのinvitro活性
は低いため、PEG化したrhG−CSFサンプルを約
4〜10倍に希釈した。各希釈度のサンプルまたは標準
40μlを、10,000細胞/ウェルを含む96ウェ
ル・マイクロタイタープレートの適当なウェルに添加す
る。37℃、5.5%CO2 という条件下に48時間置
いた後、各ウェルに0.5μmCiのメチル− 3H−チ
ミジンを追加した。18時間後、プレートを収穫し、カ
ウントした。用量応答曲線(rhG−CSF濃度の対数
(log)vs CPM−バックグラウンド)を作成
し、標準曲線の直線部分に入るポイントについて、直線
回帰分析を行った。未知のテストサンプルの濃度は、得
た直線式を使って求め、希釈率について補正した。
3種類のモノPEG化種のうちN末端にモノPEG化し
たG−CSFのin vitro生物学的活性が最高で
ある。
試験によってN末端にPEG化した物質の活性を確認し
た。In vivo試験は0.1mg/kgのサンプル
を1回皮下注射によって雄のゴールデンハムスターに投
与することによって行った。1群、1時点当り4匹の動
物から末梢血液を採取した。血清検体は採血当日に完全
血球算定にかけた。平均白血球数を計算した。図5Aお
よび5Bから分かるように、各物質による反応は、0.
1mg/kgの単回皮下注射の翌日後に最大に達してい
る。2つのモノPEG化物質(N末端とリジン35)は
反応時間が長く、一方リジン41で蛋白質をPEG化し
た物質の反応は未修飾rhG−CSFのin vivo
活性より高くなかった(実際低い、図5B)。これらの
結果は、ポリエチレングリコール分子を1個結合させる
ことによって、蛋白質の治療プロフィールが劇的に変化
する可能性があり、蛋白質をPEG化することの利点は
修飾の部位に依存する可能性があることを示唆してい
る。(単回皮下注射後の曲線下の正味平均WBC面積
(CRC Standard Mathematica
l Tables、26th Ed.(Beyer、
W.H.、Ed.)CRCPress Inc.、Bo
ca Raton、FL 1981.P.125)に従
って算出)は、リジン35とN末端のモノPEG化種で
は類似していた。) E.安定性試験 更に、上述のように調製したN末端およびリジン35に
モノPEG化した分子種について、安定性試験を実施し
た。(リジン41物質は、活性が未修飾G−CSFを上
回らないことが実証されたため使用しなかった)。これ
らの試験によって、N末端にPEG化したG−CSFが
もう一方のモノPEG化G−CSFであるモノPEG化
リジン35と比べて、保管中に予想外に安定しているこ
とが実証された。安定性はSEC−HPLCを使って視
覚化させた生成物の分解という点で評価した。
リジン35にモノPEG化したG−CSFを、pH4.
0およびpH6.0という2種類のpH、温度4℃の下
でそれぞれ最高16日間保管した。pHを6.0に上げ
ると、加速安定性試験の環境ができあがる。pH6.0
のサンプルの場合、上述のように調製した、N末端にモ
ノPEG化したG−CSFおよびリジン35にモノPE
G化したG−CSFを、20mMの燐酸ナトリウム、5
mMの酢酸ナトリウム、2.5%マンニトール、0.0
05%Tween−80を含むpH6.0の緩衝液に入
れ、最終蛋白質濃度が0.25mg/mlとなるように
した。このアリコート1mlを3mlの滅菌済み注射用
バイアルに入れて保管した。バイアルは各々4℃および
29℃において最高16日間保管した。安定性はSEC
−HPLCトレーシングによって評価した。後の測定値
が最初(時間=0)の測定値と同じであった場合(肉眼
検査によって確認)、そのサンプルはその期間だけ安定
していたと見なされた。
6AはN末端にモノPEG化したG−CSFをpH6、
4℃で保管した場合のSEC−HPLCプロフィールを
示しており、図6Bはリジン35にモノPEG化したG
−CSFをpH6、4℃で保管した場合のSEC−HP
LCプロフィールを示している。リジン35物質は分解
されて、未修飾G−CSFと類似の分子量の物質になり
つつあると解釈できる。
管。PH4.0、温度4℃という条件は、N末端種が分
解を示さない比較的安定した条件を示すある種の対照を
提供する。リジン35種の場合、物質の分解がまだ起こ
っているが、速度はかなり遅い。
6Cはこのような条件下に長期間保管した場合のモノP
EG化G−CSFのSEC−HPLCプロフィールを示
している。記載の通り、pH6.0、温度4℃の場合、
リジン35物質は16日目または35日目では、6日目
に観察されたもの(図6B)を上回る脱PEG化は観察
されなかった。これはこのような条件下では6日目を越
えても脱PEG化(不安定性)に変化がないことを示し
ている。
モノPEG化G−CSF群を調製する方法、およびこの
群の特徴を示している。上記実施例で説明した組換えG
−CSFを使用した。記載のように、この方法は、N末
端を化学的に修飾した物質の収率という点で利点がある
だけでなく、この還元アルキル化法のアミン結合は実質
的に安定した生成物を産生するという利点がある。これ
は保存後の凝集の程度に大きな差があることによって実
証される。
モノ−メトキシポリエチレングリコール−GCSF結合
体の調製 20mMのNaCNBH3 を含む100mMのリン酸ナ
トリウム(pH5)中の、冷却し(4℃)攪拌したrh
G−CSF溶液(1ml、5mg/ml、上記実施例の
ところで説明済み)に、5倍モル過剰のメトキシポリエ
チレングリコールアルデヒド(MPEG)(平均分子
量、6kDa)を加えた。同じ温度で反応混合物を攪拌
し続けた。
かは、Bio−Sil SEC250−5カラム(BI
O−RAD)を用いてSEC HPLCによってモニタ
ーした。溶離剤には0.05MのNaH2 PO4 、0.
05MのNa2 HPO4 、0.15MのNaCl、0.
01 MのNaN3 をpH6.8にて用い、流速は1m
l/分とした。
果、蛋白質の92%がモノ−MPEG−GCSF誘導体
に変換されていることが分かった。これは蛋白質濃度
(A280 における吸光度によって決定)の記録である図
7から分かる。この図からは、8.72分にモノPEG
化G−CSFの溶離ピークがあり、また9.78分に溶
離する未反応G−CSFのマイナーピークがあることが
分かる。
ミジルエステルを用いて得たピークを示している。分子
量は約6kDaであった。図から分かるように、この反
応によって得られた混合物は次のとおりであった:トリ
−MPEG−GCSF結合体(約7.25分のところに
ショルダー)、ジ−MPEG−GCSF結合体(7.6
2分にピーク)、モノ−MPEG−GCSF結合体
(8.43分にピーク)、および未反応のG−CSF
(9.87分にピーク)。
されたこの10時間の時点で、反応混合物のpHを10
0mMのHClでpH4に調整し、反応混合物を1mM
のHClで5倍に希釈した。
mMの酢酸ナトリウム緩衝液(pH4)で平衡化したH
iLoad 16/10SセファロースHPカラム(P
harmacia)を用いて、イオン交換クロマトグラ
フィによって精製した。反応混合物をカラムに添加して
流速1ml/分でランし、同緩衝液を3カラム容量用い
て未反応のMPEGアルデヒドを溶出した。次に1Mの
NaClを含む0%〜45%直線400分勾配の20m
M酢酸ナトリウム(pH4)を用いて、4℃において蛋
白質−ポリマー結合体を溶出した。
画をプールして濃縮し、滅菌濾過した。
0、25kDa)のMPEGアルデヒドでrh−G−C
SFを修飾することによって得られる様々なモノ−MP
EG−GCSF結合体を調製した。
E、ゲル濾過、マトリックスアシステッドレーザーデソ
ープション質量分析、平衡遠心分離によって求めた。結
果は以下の表4に示した。
結合体の構造は、N末端の蛋白質シーケンシングとペプ
チドマッピングによって確認した。N末端のメチオニル
残基の臭化シアン切断の結果、ポリエチレングリコール
が除去された。
生物学的活性は、 3Hチミジンのマウス骨髄細胞への刺
激取り込みを測定することによって求めた。
−GCSF結合体またはrhG−CSF(100mg/
kg)をハムスターに皮下注射し、総白血球数を測定す
ることによって求めた。非誘導体化G−CSFと比較し
た生物活性は、ベヒクル(媒体)の対照曲線を引き算し
た後のWBC/時間曲線下の面積として計算した。MP
EG−GCSF誘導体の相対的生物活性は、未修飾G−
CSFと比較した生物活性のパーセンテージとして表し
た。
Da、および20kDa)のMPEGアルデヒドによる
rhG−CFの還元アルキル化によって調製したモノ−
N末端MPEG−GCSF結合体に対する総白血球反応
を示す図9に示してある。図から分かるように、モノP
EG化分子はすべて反応を誘導した。使用したポリエチ
レングリコールの分子量が高いほど、白血球数が多くな
った。但し、12kDa型は2日目において20kDa
型と比較して、白血球数がわずかに多いだけであった。
ン)によって調製したN末端にPEG化したG−CSF
の凝集程度を比較した。予想外のことだが、アミン化学
を用いてN末端にPEG化したG−CSFは、アミド結
合によってN末端にPEG化したG−CSFよりもかな
り安定していることが分かった(NHS化学反応は実施
例1に説明済み)。
ンプルはどちらも、5%ソルビトールを含む10mMの
NaOac(pH4.0)に濃度1mg蛋白質/mlで
含まれていた。G−CSFはどちらもPEG 6000
でPEG化した。アミド結合結合体は実施例1のとおり
に調製し、アミン結合結合体は実施例2のとおりに調製
した。各々6個ずつのサンプルを45℃において8週間
保存した。8週目の終りにサイズ排除クロマトグラフィ
およびイオン交換クロマトグラフィによって凝集程度を
判断した。
きことに高温で8週間保存した後も凝集が遥かに少ない
物質を生成し、アセチル化よりも利点があることが実証
された。以下の表は、サイズ排除クロマトグラフィ(S
EC)またはイオン交換(IE)を用いて得た、両方の
物質の非凝集物質(“メインピーク”物質)の割合を示
している:
はできないため、これはかなり高い。
を実証するものである。もっと詳しく言えば、この例は
かなり均質なモノPEG化IFN−con1 群の調製方
法、およびこの群の特性を実証している。
いるが、上述のコンセンサスインターフェロンのいずれ
も化学的に修飾される可能性があることに注意すべきで
ある。このような化学的修飾には、上にリストしたよう
な任意の水溶性ポリマーを使用してよいが、ここではP
EGを使用している。PEG化にはここではPEG12
000を使用しているが、任意の水溶性PEG種を使用
してもよい(PEG12000は取扱いが容易で便利な
ために選択した)。また、化学的修飾の方法としては種
々あるが(アセチル化など)、N末端PEG化のような
選択的N末端化学的修飾については、この実施例で説明
している本還元アルキル化法が好ましい。
は、米国特許第4,695,623号(この全体を参照
として本明細書に組み入れる)の図2にあるIFN−α
con1 (本明細書ではIFN−con1 と呼ぶ)を使
用した。IFN−con1 は細菌内での外因性DNAの
発現によって生成されたもので、N末端にメチオニル残
基を持っていた。
G化 20mMのNaCNBH3 を含む、冷却し(4℃)攪拌
しておいた100mMのリン酸ナトリウム中のIFN−
con1 溶液、pH4.0(3.45mg/ml、N末
端がブロックされた形態を32.25%含む)に、8倍
モル過剰のメトキシポリエチレングリコールアルデヒド
(MPEG)(平均分子量12kDa)を加えた。
は、PLRP−S(PL Separation Sc
iences Polymer Laboratori
es)のようなポリマーベースのポリ(スチレン/ジビ
ニルベンゼン)カラムを使った逆相HPLCによってモ
ニターした。
端にブロックされたα−アミノ基を持つ蛋白質の80%
がMPEG−IFN−con1 誘導体に変換されたこと
が分かった。
で希釈し、モノ−MPEG−IFN−Con1 誘導体
を、20mMの酢酸ナトリウム緩衝液(pH4.0)で
平衡化したHiLoad 16/10 Sセファロース
HPカラム(Pharmacia)を用いたイオン交換
クロマトグラフィで精製した。反応混合物を流速1ml
/分の流速でカラムに添加し、未反応のMPEGアルデ
ヒドを3カラム容量の同緩衝液で溶出した。次に1Mの
NaClを含む20mMの酢酸ナトリウム、pH4.0
の0%〜75%の420分直線勾配を用いて、4℃にお
いて蛋白質−ポリマー結合体を溶出した。
を含む分画をプールし、濃縮して、滅菌濾過した。
ェロンの分析 1.均質性 精製したモノ−MPEG−IFN−Con1 結合体の均
質性は、10〜20%または4〜20%プレキャストグ
ラジェントゲル(Integrated Separa
tion Systems)を用いたSDS−PAGE
によって調べた。分子量35kDaのところにメインバ
ンドが現れた。
有効サイズ(流体力学的半径)を調べるために、Sup
erose 6HR 10/30(Pharmaci
a)ゲル濾過カラムを使用した。蛋白質は280nmに
おける紫外線吸光度によって検出した。BIO−RAD
ゲル濾過標準は、球状蛋白質分子量マーカーとして用い
た。
−con1 結合体の構造は、N末端蛋白質シーケンシン
グおよびペプチドマッピングの手法によって確認した。
ブロックされている物質が少し含まれており、この物質
はPEG化されていなかった。しかしPEG化されてい
た物質は、N末端がモノPEG化されていた。このよう
に、この種の状況では、イオン交換クロマトグラフィや
サイズ排除クロマトグラフィといった他の方法によっ
て、ブロックされている物質とされていない物質を分離
したほうが良いかもしれない。
tro生物学的活性は、その抗ウイルス生物活性を測定
することによって決定した。モノ−MPEG−IFN−
Con1 結合体のin vitro生物学的活性は、ヒ
ト(HeLa)細胞におけるその抗ウイルス生物活性を
測定することによって決定した。
Con1 結合体は、未修飾種と比較して20%のin
vitro生物活性(U/mg蛋白質)を示すことが分
かった。PEG化G−CSFのところで指摘したよう
に、in vitroアッセイは生物学的活性を実証す
るのには有用であるが、特徴的な徐放性のために、化学
的に修飾した蛋白質の活性がかなり低く出ることがあ
る。In vivo生物学的活性はin vitro生
物学的活性より高いかも知れない。
修飾コンセンサスインターフェロン 予め除去したN末端ブロック分子の一部を持つ上述のI
FN−con1 に対しても、本還元アルキル化を実施し
た。上述のように還元アルキル化法にはPEG1200
0とPEG 20000の両方を用いた。
った:
ったIFN−con1 20kDAPEG結合体の分析
では、3つのピークが現れた: モノMPEG−IFN−con1 :総面積の66%(2
65.93mlで溶出) 蛋白質凝集物およびオリゴMPEG−IFN−con1
結合体:総面積の24%(238.42mlで溶出) 未反応のIFN−con1 :総面積の10%(328.
77mlで溶出)。
トグラフィまたはその他の方法を使えば、モノPEG化
物質を更に分離することができるかも知れない。
が、当業者には修正や変更が可能であることは理解され
よう。従って添付の請求の範囲はその発明の範囲内にあ
るこういったすべての同等の変更を包含するものであ
る。
ラフィーから得たピークのクロマトグラムを図示したも
のである。
DS−PAGEである。
ンA):組換えヒトメチオニルG−CSFの標準品;
(レーンB):SCM−PEG−GCSF反応混合物;
(レーンC):N末端PEG化G−CSF;(レーン
D):リシン35モノPEG化G−CSF;(レーン
E):リシン41モノPEG化G−CSFである。
ドマッチングトレーシングであり、図3AはN末端PE
G化G−CSFを示す。
ドマッチングトレーシングであり、図3Bはリシン35
モノPEG化G−CSFを示す。
ドマッチングトレーシングであり、図3Cはリシン41
モノPEG化G−CSFを示す。
ro生物活性を非PEG化標準品のそれと比較して示す
棒グラフである。
vo生物活性のアッセイ結果を示すグラフであり、図5
Aは、N末端PEG化G−CSF、リシン35モノPE
G化G−CSFまたはリシン41モノPEG化G−CS
Fを一回皮下注射した後のハムスターの平均白血球数を
示す。
vo生物活性のアッセイ結果を示すグラフであり、図5
Bは上記の各種モノPEG化G−CSF誘導体を一回皮
下注射した後の、正味の平均白血球数の曲線下面積を示
す。
モノPEG化G−CSFの安定性の試験結果のSEC−
HPLCプロフィールである。図6Aは、(6A)N末
端モノPEG化G−CSFまたは(6B)リシン35モ
ノPEG化G−CSFのpH6.0で4℃にて行った安
定性試験のプロフィールを示す。
モノPEG化G−CSFの安定性の試験結果のSEC−
HPLCプロフィールである。図6Bは、(6A)N末
端モノPEG化G−CSFまたは(6B)リシン35モ
ノPEG化G−CSFのpH6.0で4℃にて行った安
定性試験のプロフィールを示す。
モノPEG化G−CSFの安定性の試験結果のSEC−
HPLCプロフィールである。図6Cは、リシン35モ
ノPEG化G−CSFのpH6.0で4℃にて行った時
間を延長した安定性試験の結果を示すプロフィールであ
る。時間(「T」)は日数を示す。
コールアルデヒド(MW6kDa)との還元的アルキル
化反応の過程での反応混合物のサイズ排除HPLCによ
る分析結果を示す。
ステル(MWはやはり6kDa)を用いた反応混合物の
サイズ排除HPLCによる分析結果を示す。
20kDa)MPEGアルデヒド類でrh−G−CSF
の還元的アルキル化を行うことによって製造したモノN
末端MPEG−GCSF結合体に対する、一回の皮下投
与後の全白血球応答を示す。
Claims (19)
- 【請求項1】 少なくとも一つの水溶性ポリマー部分に
結合させたコンセンサスインターフェロンタンパク質部
分からなる化学修飾コンセンサスインターフェロン。 - 【請求項2】 前記コンセンサスインターフェロン部分
が、IFN−con1 、IFN−con2 およびIFN
−con3 からなる群から選択される請求項1記載の化
学修飾コンセンサスインターフェロン。 - 【請求項3】 前記水溶性ポリマーが医薬的に許容でき
る請求項2記載の化学修飾コンセンサスインターフェロ
ン。 - 【請求項4】 前記水溶性ポリマーが、デキストラン、
ポリ(N−ビニルピロリドン)、ポリエチレングリコー
ル類、プロピレングリコールホモポリマー類、ポリプロ
ピレンオキシド/エチレンオキシドコポリマー類、ポリ
オキシエチル化ポリオール類およびポリビニルアルコー
ル類からなる群から選択される請求項1記載の化学修飾
コンセンサスインターフェロン。 - 【請求項5】 前記水溶性ポリマー部分がポリエチレン
グリコールである請求項4記載の化学修飾コンセンサス
インターフェロン。 - 【請求項6】 前記水溶性ポリマー部分が、前記コンセ
ンサスインターフェロン部分に、追加の結合基なしで直
接結合されている請求項1記載の化学修飾コンセンサス
インターフェロン。 - 【請求項7】 少なくとも一つのポリエチレングリコー
ル部分に結合されたIFN−con1 からなる化学修飾
コンセンサスインターフェロン。 - 【請求項8】 PEG化コンセンサスインターフェロ
ン。 - 【請求項9】 単一の反応性アルデヒド基を有する水溶
性ポリマーをコンセンサスインターフェロンに結合する
方法であって、 (a)還元アルキル化反応の条件下、前記コンセンサス
インターフェロン部分のアミノ末端のα−アミノ基を選
択的に活性化するのに充分な酸性pH下で、コンセンサ
スインターフェロン部分を水溶性ポリマー部分と反応さ
せ、 (b)反応生成物を得、次いで (c)任意に、反応生成物を未反応部分から分離する、
ことを含んでなる方法。 - 【請求項10】 前記ポリマーが医薬的に許容可能であ
る請求項9記載の方法。 - 【請求項11】 前記水溶性ポリマーが、デキストラ
ン、ポリ(N−ビニルピロリドン)、ポリエチレングリ
コール類、プロピレングリコールホモポリマー類、ポリ
プロピレンオキシド/エチレンオキシドコポリマー類、
ポリオキシエチル化ポリオール類およびポリビニルアル
コール類からなる群から選択される請求項9記載の方
法。 - 【請求項12】 前記ポリマーがポリエチレングリコー
ルである請求項11記載の方法。 - 【請求項13】 前記還元アルキル化反応に、ホウ水素
化ナトリウム、シアノホウ水素化ナトリウム、ホウ酸ジ
メチルアミン、ホウ酸トリメチルアミンおよびホウ酸ピ
リジンを使用する請求項9記載の方法。 - 【請求項14】 単一の反応性アルデヒド基を有するポ
リエチレングリコール分子をコンセンサスインターフェ
ロン分子に結合する方法であって、 (a)還元アルキル化反応の条件下、前記コンセンサス
インターフェロンのアミノ末端のα−アミノ基を選択的
に活性化するのに充分な酸性pH下で、前記コンセンサ
スインターフェロンを前記ポリエチレングリコール分子
と反応させ、 (b)PEG化コンセンサスインターフェロンを得、次
いで (c)任意に、上記PEG化コンセンサスインターフェ
ロンを非PEG化コンセンサスインターフェロンから分
離する、ことを含んでなる方法。 - 【請求項15】 前記ポリエチレングリコール分子の分
子量が約2kDa〜約100kDaである請求項14記
載の方法。 - 【請求項16】 請求項14記載の方法で製造されたP
EG化コンセンサスインターフェロン物質。 - 【請求項17】 モノPEG化コンセンサスインターフ
ェロンの実質的に均質な製剤。 - 【請求項18】 約90%のモノPEG化コンセンサス
インターフェロンおよび約10%の非PEG化コンセン
サスインターフェロンを含んでなる請求項17記載の製
剤。 - 【請求項19】 (a)アミン結合によりコンセンサス
インターフェロン部分のN末端のみに結合したポリエチ
レングリコール部分を有するモノPEG化コンセンサス
インターフェロンの実質的に均質な製剤、(b)5%未
満の非PEG化コンセンサスインターフェロン分子、お
よび(c)医薬的に許容できる希釈剤、助剤または担体
を含有してなる医薬組成物。
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