JPH09191900A - 抗体の可変ドメインの免疫原性を減少させる方法 - Google Patents
抗体の可変ドメインの免疫原性を減少させる方法Info
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- JPH09191900A JPH09191900A JP4124923A JP12492392A JPH09191900A JP H09191900 A JPH09191900 A JP H09191900A JP 4124923 A JP4124923 A JP 4124923A JP 12492392 A JP12492392 A JP 12492392A JP H09191900 A JPH09191900 A JP H09191900A
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Abstract
二の哺乳動物種の免疫原性に変換させるという免疫グロ
ブリン表面アミノ酸を同定及び置換させることに対する
独特な方法に関する。 【効果】 本願発明の方法は同時に免疫原性を変化さ
せ、更にリガンド結合特性を厳格に保存し、外側のアミ
ノ酸残基の賢明な置換はリガインド結合特性に影響を与
えず免疫原性を大幅に変化させる。
Description
はヒト疾患においてこれらの精妙な特異的分子の数多く
の治療学的適用を導いている。分子生物学の技術は、ク
ラス交換した分子の官能性を相補性定着の獲得あるいは
喪失により改良させたこの分子の創製を許容することに
より、更に多くの抗体の有用性を増大させている。生物
活性分子の大きさは抗体の組織標的有用性を高めるため
に、クラスをIgMからIgGに変更するか、F(a
b)2 の創製における大部分のH鎖定常領域あるいはF
v抗体の形成において不要である重鎖及び軽鎖定常領域
を取り除くかによって減少させることもできる。抗体の
これら全ての治療学的形態に対する共通点は、分子をリ
ガンドへ導く必須CDR(相補性決定領域)及びこれら
後者の構造を支持し更にCDRの位置を指示するフレイ
ムワ−ク残基(FR)を有することである(Winter Eur
opean Patent Application, Publication No.239,400;R
iechmann et al., Nature 332:323-327(1988))。多くの
抗体構造の結晶学的解析は限定数のル−プモチ−フ中で
配列変換したほぼ完全なCDR残基からなっていること
を示す(Padlan and Sheriff,1990)。CDRをその一次
配列の価値ある超可変性と結合するこれらの構造を形成
する必要性は抗原結合部位における変換を導きしかし限
定数の可能性を有している。従って、超突然変異性及び
CDRに対して反復性の限定した一次配列は一種の動物
から得られる抗原から由来するCDRが別の動物種から
由来するものと同じであることを示唆している。すなわ
ち、それらは免疫原性が低く、とりわけ非外来状況にお
いて受容者たる微生物に存在する場合はそうである。
抗体は免疫化したネズミから最も容易に得られる。ヒト
を源とする同様な試薬の研究は十分量の抗体を生ずる細
胞の長期間の培養を維持できないことにより挫折してい
る。ヒトを源とする細胞を人に使用すべき試薬の産生に
使用した場合調節的な面から更なる問題が生ずる。これ
らの点を考慮して、悪性腫瘍の画像化及び処置、毒性シ
ョックに対する防御のための予防的投与、移植拒絶反応
の改変、及び急性炎症反応を和らげるためにネズミモノ
クロ−マル抗体の使用が広まっている。完全ネズミある
いは不完全ネズミ(ネズミ−ヒトのキメラ)抗体は抗体
に直接免疫応答を禁ずる受容者の治療に使用されてい
る。これらの反応は治療の持続時間並びに有効性を限定
するものである。
疫原性を最小化するあるいは完全になくすことが種々試
みられている。まず、キメラ抗体がネズミ可変領域及び
ヒト定常ドメインに融和した会合したCDRを含有させ
て構築された。以下の参考文献はキメラ抗体技術を一般
的に記載している;Lobuglio et al.,Proc.Natl.Acad.S
ci.USA 86:4220-4224(1989);U.S.Patent 4,816,567;PCT
Internationao Publication No.WO87/02671(May,7,198
7);European Patent Publication No.255,694(February
10,1988);European Patent Publication No.274,394(J
uly 13,1988);European Patent Publication No.323,80
6(July 12, 1989);;PCT InternationalPublication No.
WO89/00999(February 9,1989); European Patent Publi
cationNo.327,000(August 9,1989);European Patent Pu
blication No.328,404(August16,1989); European Pate
nt Publication No.332,424(September 13, 1989)。こ
れらの文献では免疫原性はより低くなっているがネズミ
可変領域フレイムワ−ク残基への免疫応答が約半分の受
容者に認められることを示している。更に、”外来性”
天然キメラ抗体は適当な定常ドメインを融合する前にヒ
ト支持フレイムワ−クへネズミモノクロ−ナルからのC
DRのみを移植することにより達成されている(Winter
European Patent Application,Publication No.239,40
0;Riechmann et al.,Nature 332:32-327(1988))。CD
R接合を達成するに使用される方法はしばしば不完全”
ヒト化”抗体を与える。言うなれば、得られた抗体は親
和性(アビジチ−)を失っているか(通常2−3倍、最
良で)あるいは元の親和性を保つ試みにおいて重要数の
ネズミフレイムワ−ク残基を対応する選択したヒトフレ
イムワ−クに置き換えたもののどちらかである。後者に
おいて、改変した”ヒト化”抗体の免疫原性はaプライ
オリを予測するに困難である。
つかの近接残基が抗原結合において含まれていることが
見出されたにもかかわらず、CDRの構造及び相対的位
置によりまず決定される(Davies et al.,Ann.Rev.Bioch
em.59:439-473(1990))。特異性はCDR構造が、お互い
に相互作用し、そして可変ドメインの残りと相互作用す
る場合にのみ”ヒト化”抗体において厳密に維持され
る。カギとなる残基は”外来性”及び内部ドメイン接触
残基を表し、免疫監視に対し直に入手可能なこれらの表
面暴露された残基は構造的残基を含まないべきである。
モノクロ−ナル抗体を別の哺乳類種のモノクロ−ナル抗
体へ変換する手段を提供することである。他の目的はモ
ノクロ−ナル抗体の外側上における種特異性あるいは免
疫原性に反応するアミノ酸残基を同定することである。
もうひとつの目的は第一種の抗体が第二種において免疫
原性とならないように一種の外部アミノ酸残基を第二種
の外部アミノ酸残基で賢明に置換あるいは化粧張りさせ
ることである。更なる目的は相補性決定領域においてで
は無く、抗体分子の重鎖及び軽鎖のフレ−ムワ−ク領域
においてのみ置換を行うことである。本発明の別の目的
は置換アミノ酸残基を組み込んだ新規なDNA配列を提
供することである。他の目的は改変した抗体に対するD
NA配列を含有するベクタ−を提供することである。他
の目的は化粧張りした抗体に対するDNA配列を含有す
るベクタ−を用いて形質転換した真核あるいは原核宿主
を提供することである。
物種の免疫原性に変換させるという免疫グロブリン表面
アミノ酸を同定及び置換させることに対する独特な方法
を開示する。この方法は同時に免疫原性を変化させ、更
にリガンド結合特性を厳格に保存するであろう。外側の
アミノ酸残基の賢明な置換はリガインド結合特性に影響
を与えず免疫原性を大幅に変化させる。
ガンド結合特性をそっくり保存しながら、その免疫原性
を低下させるという、「ヒト化(humanization)」の手法
に関する。タンパク質の抗原性は主としてその表面性状
に依存するので、異種あるいは同種異型抗体の免疫原性
は他方の哺乳動物種の抗体に通常見られるものとは異な
る露出残基を取り替えることにより低下できるはずであ
る。この賢明な外部残基の取り替えは内部ドメインある
いはドメイン間接触に殆どもしくは全く影響を与えない
ものであるべきである。すなわち、改変が当該可変領域
のフレームワーク残基に限られ、その結果としてリガン
ド結合特性は改変による影響を受けないことが望まれ
る。この方法は、抗体の支持残基を攪乱せずにその外表
面すなわち表皮だけを改変することから、「化粧張り(v
eneering) 」と称される。
quences of Proteins of Immunological Interest(免
疫学的に重要なタンパク質の配列)", 第4版, Bethesd
a, Maryland: National Institute of Health, 1987に
集成されているヒト抗体可変ドメインについての利用可
能な配列データ、このデータベースの追録、およびこれ
以外の米国あるいは他の国でアクセス可能なデータベー
ス(核酸およびタンパク質の両方)を利用する。これら
の種々の配列を取り込んだサブグループを(図1〜図
7)に提示する。そこには各フレームワークの位置に最
も頻繁に現れるアミノ酸が表示される。また、種々のJ
ミニ遺伝子(J-minigene)の配列も併せて提示する。こ
れらのアミノ酸の溶媒アクセス可能性は、ヒトおよびマ
ウス抗体断片の既知の三次元構造から導かれ、それも併
せて提示する。
の高解像度X線結晶学を、ProteinData Bank(Bernstei
nら, J. Mol. Biol. 112: 535-542 1977; file 2FB4 fo
r KOLおよびfile 2FBJ for J529)を初めとした広範な
精査にかけた。その溶媒アクセス可能性をPadlan Prote
ins: Struct. Funct. Genet. 7: (1990)に記載されるよ
うにして算出した。
る。第1の段階では、第1の動物種すなわちマウスの可
変ドメインのフレームワークを、第2の動物種すなわち
ヒトの対応するフレームワークと比較する。なお本発明
は、あらゆる動物種の抗体の抗原性を改変しようとする
ものである。本発明がネズミ抗体をヒト抗体に変換する
ことを示しているのは、単に例示のためであるにすぎな
い。次いで、最も相同性が高いヒト可変領域と対応する
ネズミ領域の残基同士を比較する。これはまた、各マウ
ス配列が最もよく似ているヒトサブグループを決定する
ことにもなる。第2の段階では、マウスフレームワーク
のうちヒト対応部と異なるものを、そのヒト対応部に存
在する残基によって置き換える。このスイッチングは少
なくとも部分的に露出している残基(図1〜図7中のm
EおよびEx)についてのみ生じさせる。「化粧張り」
マウス抗体中で保存されるものは次の通りである:その
CDR、CDRに隣接する残基、埋没もしくはほぼ埋没
した残基(図1〜図7中のmBおよびBu)、およびド
メイン間接触に関与していると思われる残基(図1〜図
7中の太字)。
鎖および軽鎖のN末端がいずれも異なる。これらのN末
端はCDR表面に隣接しており、リガンド結合に巻き込
まれる位置にある。したがって、これらのネズミ末端は
その「化粧張り」体においても保存すべきである。
は可変領域ドメインの三次元構造あるいは静電的相互作
用に重大な影響を与える可能性がある。すなわち、プロ
リン、グリシン、あるいは電荷を帯びたアミノ酸を取り
替える場合には注意が必要である。
第1の哺乳動物種すなわちヒト以外の動物のモノクロー
ナル抗体(mMAb)のCDR(軽鎖および重鎖の双
方)を第2の哺乳動物種すなわちヒトのものに見せかけ
たフレームワークに組み込んだ組換えDNA配列を調製
する。これは、その動物モノクローナル抗体の抗原特異
性を有する組換えヒト抗体の発現のために哺乳動物細胞
にトランスフェクションさせるのに使用できる。さらに
本発明は、改変された抗体を構築し発現する方法を包含
し、その方法は:(i)CDRを含む可変領域ドメイン
の変異および組立、並びにCDRおよびFRの領域を含
む可変領域ドメインの変異および組立;(ii)細胞に
トランスフェクションさせたときに親和性(avidity) お
よび特異性の決定に十分なタンパク質分泌を起こさせる
少なくとも1つの可変領域を含む発現ベクターの調製;
および (iii)適当な細胞系での重鎖および軽鎖発現ベク
ターの同時増幅からなる。本発明は、ヒト以外の動物の
モノクローナル抗体からのCDRを、その性状がヒト免
疫グロブリンに見せかけられたフレームワークに組み込
むための遺伝子組換え法を提供するものであり、それに
より得られる組換え抗体はヒトに投与されたときに免疫
原性が弱いか、または免疫原性を示さない。組換え免疫
グロブリンは、治療の目的で投与されたときに自己タン
パク質と認識されるものであることが好ましい。この
「化粧張り」法による組換え抗体は、ヒトに投与された
ときに免疫原性が弱いかまたは免疫原性がないことか
ら、治療剤として有用である。本発明はさらに、(以下
に述べるように)適当なフレームワーク領域を特定し
て、あらゆるヒト以外の動物のモノクローナル抗体を、
「ヒトのものに見せかけた」組換えモノクローナル抗体
に変換する遺伝子組換え法を包含するものである。上記
ヒト以外の動物のモノクローナル抗体としては、Van Vo
orhisら, J. Exp. Med. 158: 126-145 (1983) に記載さ
れたヒト白血球に結合するネズミモノクローナル抗体
や、American Type Culture Collection (ATCC) が維持
するHybridoma Cell Bankに寄託され、ATCCのカタ
ログ、Cell Lines 8 Hybridomas, No.6, 1988に記載さ
れたハイブリドーマによって生産される適当なmMAb
が含まれるが、それらに限定されるものではない。
は次のようにして誘導される。ネズミハイブリドーマ、
たとえば、Wrightら, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80:
5699-5703 (1983) に記載される1B4ミエローマ細
胞、Beattyら, J. Immunol. 131: 2913-2918 (1983) に
記載される60.3細胞、Sanchez-Madridら, J. Exp.M
ed. 158: 1785-1803 (1983)に記載されるTS1/18
細胞、あるいはLeukocyte Typing lll, Springer-Verla
g, New York (1983)に記載されるようなその他の抗CD
18またはCD11モノクローナル抗体およびハイブリ
ドーマから、イソチオシアン酸グアニジニウムを用いて
細胞を可溶化する標準的な方法(Chirgwinら, Biochem.
18: 5294-5299[1979])を用いて全RNAを抽出する。
以下に開示する独特な方法で「化粧張り」することがで
きる動物MAbの例としては、ネズミ1B4 mMAb
を主として用いることにする。本発明は、あらゆるヒト
以外の動物の免疫グロブリンを、「ヒトのものに見せか
けた」免疫グロブリンに変換することを包含するもので
ある。また、「ヒトのものに見せかけた」免疫グロブリ
ン(Ig)とは、カッパもしくはラムダ軽鎖のいずれ
か、または次の重鎖アイソタイプのいずれか1つを含み
得るものとする(アルファ、デルタ、イプシロン、ガン
マおよびミュー)。
ク1(FR1)と軽鎖定常ドメインの間の配列、あるい
はネズミIgG2a重鎖可変領域のフレームワーク1と
重鎖定常CH1ドメインの間の配列を表す、縮重オリゴ
デオキシヌクレオチドプライマーの対(図8)をApplie
d Biosystem 381A DNAシンセサイザー上で合成
し、濃NH4OH処理により樹脂からはずし、NAP−
5カラム上でのH2O溶出により脱塩する。全RNA
(約2μg)を、Moloney MLV逆転写酵素約200ユ
ニット(BRL)および上記重鎖もしくは軽鎖定常領域
のいずれかのための相補鎖プライマー約10ピコモルを
用いて、42℃で30分間逆転写する。逆転写酵素を約
95℃で約5分間加熱して失活させ、反応系がPCR緩
衝液約100μL中に各プライマー対それぞれ約50ピ
コモルおよびTaqポリメラーゼ約2.5ユニットを含
むようにする。約45サイクルの増幅(94℃で2分;
55℃で2分;72℃で2分)の後、予想される400
+塩基対(bp)のDNA断片のゲル精製を行う。これ
らのDNAをT4ポリヌクレオチドキナーゼを用いて末
端ホスホリル化した後、pSP72(Promega) のよう
な平滑末端化中間体プラスミド中にサブクローニングす
る。これらのPCR増幅配列を含む多数のクローンを増
殖させ、Sequenase (商品名)並びにT7およびSP6
特異的シーケンシングプライマーを用いてDNA配列の
決定を行う。誘導されるアミノ酸配列の解析により、ネ
ズミIgG2a重鎖可変領域を表す単一のDNA配列を
得る。「ネズミ型の外観を見せる」フレームワーク残基
とヒト可変領域に適合する残基との置換は以下の独特な
方法を用いて行われる。適当なヒトフレームワークは下
記の規準にしたがって決定される。m1B4フレームワ
ークと十分な相同性をもった軽鎖可変領域フレームワー
クはヒトLENフレームワーク(FR)であることがわ
かった。Len FRはネズミ1B4に対して90%の
相似性と81%の同一性を示す。この配列をそのリーダ
ー配列、3’イントロン配列、および移植したm1B4
のCDRとともに、Daughertyら, Nucleic Acids Res.
19: (1991)に記載されるようにして中間体ベクターpG
EM3Z(Promega) 中にサブクローニングする。ポリ
メラーゼ連鎖反応(PCR)増幅で4つのDNA断片を
作るのに必要なプライマーである約8個のオリゴデオキ
シヌクレオチドプライマー(図9)を合成する。続いて
上記4つのDNA断片のPCRによる遺伝子組換えを行
うため、末端オリゴデオキシヌクレオチドプライマーを
除くすべてのプライマーに、そのCDRおよび少なくと
も15塩基の5’末端相補部は改変していない「化粧張
り」MAb1B4軽鎖に対応する配列を組み込む。「化
粧張り」法を例示するために、ネズミ1B4軽鎖の中の
ものを表すCDRの移植されたセットを予め含ませたL
EN軽鎖可変領域を変異を入れる鋳型として用い、「化
粧張り」フレームワーク配列の創製が容易にできるよう
にする。適当なプライマー対(S1とV9、V10とV
11など)それぞれ約50ピコモルを、CDRを移植し
たLENフレームワークを含むプラスミドDNA約10
ng、およびTaqDNAポリメラーゼ約2.5ユニッ
トと合わせて、PCR増幅約25サイクル(1サイク
ル:94℃で1分;55℃で2分;72℃で2分)を行
う。4回の反応の産物をアガロースゲル電気泳動で精製
し、各DNA断片それぞれ約10ngずつを末端オリゴ
デオキシヌクレオチドプライマー(A1およびA2、図
10)およびTaqDNAポリメラーゼと合わせる。合
わせた断片を約25サイクルPCR増幅する(1サイク
ル:94℃で2分;55℃で2分:72℃で2分)。増
幅したDNAをHindIIIおよびXbaIを用いて
制限酵素消化した後、アガロースゲル電気泳動で精製
し、これをヒトカッパ軽鎖定常領域を含む中間体ベクタ
ーpSP72(Promega) の適合部位にサブクローニン
グする(図11)。ヒトB細胞系(GM01018A:
NIGMS Human Genetic Mutant Cell Repository, Instit
ute for Medical Research, Canden, NJ)から精製した
ゲノムDNA約1μgを、カッパ軽鎖定常領域に対する
スプライスアクセプター、エクソン、および3’非翻訳
領域の一部を含む約920塩基対断片のPCR増幅のた
めの鋳型(図8)として用いる。このPCR産物をアガ
ロースゲル電気泳動で精製し、制限酵素BamH1で消
化し、予めBamH1で線状にしたpSP72中にサブ
クローニングする。1B4「化粧張り」軽鎖可変領域お
よびヒトDNAのPCR増幅により得られるヒトカッパ
定常領域の両方を含む中間体ベクターpSP72を含む
個々のクローンを、「化粧張り」軽鎖可変領域のDNA
配列の決定に用いる。組換え抗体の「化粧張り」重鎖部
分は、Flanagan及びRabbits, Nature 300: 709-713 (19
82)により作成されたラムダライブラリーから得られる
ヒトのガンマ4サブタイプの定常領域に融合させたネズ
ミ1B4重鎖可変領域の変異体から誘導される。この
「化粧張り」重鎖の可変領域はシグナル配列を表す5つ
のDNA断片、変異を起こしたネズミ重鎖可変領域の一
部、およびイントロン配列からなる(図12)。前にネ
ズミ1B4のCDR配列の決定に用いられた重鎖可変領
域を含む中間体pSP72から得られるプラスミドDN
A鋳型約10ngから、PCR増幅によりこれらの5つ
のDNA断片を生成するのに必要なプライマーを表すオ
リゴデオキシヌクレオチドプライマー対(図9)を合成
する。シグナル断片、可変領域断片、およびイントロン
を含む断片の増幅は上記と同様に行う。アガロースゲル
で精製した産物をそれぞれ約10ngずつ、末端オリゴ
デオキシヌクレオチドプライマー対と合わせ(図1
2)、このPCRで作ったインビトロ組換え鋳型を、上
記の標準的手法を用いて増幅する。ヒトの重鎖ガンマ4
定常領域(図13)を含むHindIII及びBamH
1消化した発現ベクター中にサブクローニングする前
に、この組換え体を同様に消化してアガロースゲルで精
製する。個々のクローンについて、Sequenase 並びにT
7及びSP6特異的シーケンシングプライマーを用いた
DNA配列決定を行い、そのうちの1つを以降の発現の
ために用いる。このガンマ4重鎖定常領域は、プラスミ
ドpAT84から誘導される約6.7KbのHindI
II断片として、中間体プラスミドpSP72のHin
dIII部位にサブクローニングする。次いでこのプラ
スミドを鋳型DNAとして用い、PCR増幅および図8
に示すプライマー対を用いてガンマ4定常領域の短縮形
をサブクローニングする。真核生物発現ベクターは以下
のようにして構築される。
主内での遺伝子のクローニングコピーの転写およびそれ
らのmRNAの翻訳に必要なDNA配列をいう。そのよ
うなベクターは、真核生物遺伝子を細菌、緑藻類、植物
細胞、酵母細胞、昆虫細胞、動物細胞など種々の宿主内
で発現するのに用いることができる。免疫グロブリンは
また多くのウイルス系内で発現させてもよい。特別に設
計されたベクターでは、細菌−酵母あるいは細菌−動物
細胞のように宿主間でのDNAのシャトリングを行うこ
とができる。適当に構築された発現ベクターというの
は、宿主細胞中での自己複製のための複製起点、選択マ
ーカー、限定された数の有用な制限酵素切断点、高いコ
ピー数を得る能力、および強力なプロモーターを含む必
要がある。プロモーターとは、RNAポリメラーゼに対
し、DNAに結合してRNAの合成を開始するように指
示するDNA配列をいう。強力なプロモーターというの
は、高い頻度でmRNA合成を開始させるものである。
発現ベクターにはクローニングベクター、改変クローニ
ングベクター、特別に設計されたプラスミドあるいはウ
イルスなどを含めてもよく、またこれらに限定されるも
のでもない。重鎖免疫グロブリン分子はネオマイシン
(G418)耐性マーカーを擁するプラスミドから転写
され、一方、軽鎖免疫グロブリンはヒグロマイシンB耐
性マーカーを擁するプラスミドから転写される。これら
のプラスミドは、その薬剤耐性部分を除いて同一であ
る。免疫グロブリン発現ベクターの元となる好ましいベ
クターは、pD5(Berkner and Sharp, Nucl. Acids R
es. 13: 841-857 [1985])という真核生物発現ベクター
であり、これはアデノウイルス複製起点、SV40エン
ハンサー領域、アデノウイルス主要後期プロモーター、
アデノウイルス2三分節系リーダー配列、アデノウイル
ス第3リーダーに由来するの5’スプライスドナー、免
疫グロブリン座に由来する3’スプライスアクセプタ
ー、ベクターの受け入れに続いてBamH1部位に入る
マルチクローニング部位、およびSV40の後期ポリア
デニル化シグナルを含んでいる(図14)。複製起点を
EcoR1およびKpnIによる消化で除去し、neo
選択マーカー遺伝子(プラスミドpCMVIE−AK1
−DHFRから約1.8KbのEcoR1/BamH1
断片として誘導される)およびIg重鎖エンハンサー
(鋳型としてヒトDNA、プライマー対として図8に掲
げたオリゴデオキシヌクレオチドを用い、それをBgl
IIで消化するPCR増幅断片として得られる)を表す
2つの断片で置き換える。得られる発現ベクターはネオ
マイシン遺伝子の転写に必要なTKプロモーターの小部
分を欠いていることがわかる。これは図8に掲げたプラ
イマー対を用いてCMVIE−AK1−DHFRのDN
Aから誘導される約0.14KbのPCR増幅断片をE
coR1部位に挿入したことにより置き換えられてい
る。得られる重鎖発現ベクター(p8941)をHin
dIIIおよびXbaI部位の標準法を用いた除去によ
り改変する。このベクターをヒグロマイシンB選択マー
カーを発現するものに変換するために、まずEcoR1
消化してネオマイシン耐性カセットを除去し、次に5’
突出末端をDNAポリメラーゼによって埋め、さらにS
alI消化する。約1.9KbのヒグロマイシンB発現
カセット、すなわちヒグロマイシンB遺伝子とその両側
に隣接するTKプロモーターおよびTKポリアデニル化
シグナル(プラスミドpL690、Gritz and Davies,
Gene 25: 179-188 [1981]中の1.8KbのBamH1
断片として得られる)を、BamH1消化によりプラス
ミドpAL−2から切り出し、中間体ベクターpSP7
2のBamH1部位にサブクローニングする。このベク
ターからSmaIおよびSalI消化によりヒグロマイ
シンBカセットを切り出し、上述のように線状化され平
滑末端およびSalI末端をもつDNA断片となった発
現ベクター中にクローニングする(図15)。
は、このシストロンを、ヒトカッパ定常領域を含むpS
P72系の中間体クローニングベクター(p8952)
から、ヒグロマイシンB選択性の真核生物発現ベクター
に移すことにより行われる(図11)。p8952のS
peIおよびClaIを用いた制限酵素消化によって得
られる約1.5KbのDNA断片をアガロースゲル電気
泳動で精製し、予め線状化して同じ2つの制限酵素で消
化した後にアガロースゲル精製した発現ベクターにつな
ぐ。重鎖真核生物発現ベクターは2段階で構築される。
まず、ネズミ1B4改変重鎖可変領域を含むp8950
ベクターをBglIIおよびBamH1で消化する。ア
ガロースゲル精製した0.75Kbの断片をp8941
ベクターのBamH1部位につなぎ、この断片を正しい
向きで含む組換え体クローンを同定する。そのようなク
ローンの1つからのプラスミドDNAをBamH1消化
で線状化し、プラスミドpAT84からPCR増幅によ
り誘導されたヒトガンマ4定常領域の短縮形を表す1.
78KbのBamH1断片とつなぐ。これらのインサー
トを正しい向きで含むクローンを同定した後、プラスミ
ドDNA(p8953とよばれる)を増殖精製して受容
体の哺乳動物細胞へのトランスフェクションに用いる。
1B4「化粧張り」IgG4重鎖および1B4「化粧張
り」カッパ軽鎖をそれぞれコードする等量(約10μ
g)のプラスミドを、標準のリン酸カルシウム沈降法で
サル腎臓細胞系CV−1Pまたはヒト胎児腎臓細胞系2
93にトランスフェクションする。培養の上清をトラッ
プELISA法(後述する)で検定し、ヒトのカッパー
軽鎖/ヒトIgG4免疫グロブリンを含んでいることを
確認する。Immlon 2(Dynatech Labs.)96穴
プレートを、約0.1MのNaHCO3 緩衝液(pH
8.2)中約5μg/mLのマウス抗ヒトカッパ軽鎖定
常ドメインモノクローナル抗体(cat. # MC009, The Bi
nding Site, Inc., SanDiego, CA)により約4℃で一晩
コーティングし、約0.1MのNaHCO3中約1%の
ウシ血清アルブミン(BSA)により約25℃で約1時
間ブロックする。この工程およびそれに続くすべての工
程の後にリン酸塩緩衝液(PBS)で洗浄を行った。次
に、ウェルを組換え抗CD18抗体を含む馴致培地、ま
たはプロテインA−セファロース(Pharmacia Fine Che
micals)クロマトグラフィーでヒトIgG4ミエローマ
血清(cat. # BP026, The Binding Site, Inc.)から精
製された所定量のヒトIgG4/カッパーを加える。約
0.05%のTween−20を含むPBSで希釈す
る。約100μLずつ3連で約37℃にて約1時間培養
し、約10ng/mL〜約100ng/mLにわたる濃
度のIgG4を用いて標準検量線を作成する。結合して
十分に組上がったヒトIgG4(本来のIgG4または
組換え1B4ヒト「化粧張り」IgG4のいずれかが構
築される)を、約1%のBSAを含むリン酸塩緩衝液
(PBS)中1:500に希釈したアルカリホスファタ
ーゼに結合したマウス抗ヒトIgG4 Fcモノクロー
ナル抗体(cat. # 05-3822, Zymed Laboratories, In
c.)試料約100μLを用いて検出する。約37℃にお
ける約1時間の培養及びそれに続く洗浄の後、全サンプ
ルを0.1Mの2,2’−アミノメチル−プロパンジオ
ール緩衝液(pH10.3)中1mg/mLのp−ニト
ロフェニルホスフェート溶液で約25℃にて約30分間
培養することにより結合体の量を検出する。ウェルの吸
光度を405nmに設定したUV Max ELIZA
プレートリーダー(Molecular Devices) を用いて測定
する。トランスフェクションされたヒト293細胞また
はサル腎臓CV1P細胞により分泌された抗体を、過渡
的発現を経るかあるいは安定したクローンの単離の後
に、プロテインAクロマトグラフィーにより単離し、組
換えヒト抗CD18抗体の濃度を上記のトラップELI
ZAで測定し、これを活性化したヒトPMN表面上での
放射能ラベルしたネズミ1B4のCD18リガンドへの
結合と競合させるのに用いる。r抗CD18抗体構築体
の親和性は、刺激を受けたヒトPMNに対する125 I−
m1B4との競合的可溶性結合アッセイを用いて決定す
る。精製ネズミ抗CD18モノクローナル抗体(50μ
g)はクロラミンTを用いてヨード化する(Hunter, W.
M.およびGreenwood, F. C., Nature 194: 495-496, 19
62)。放射ラベルした抗体は、0.1Mリン酸バッファ
ー(pH7.0)で平衡化したBio−Sil TSK
250( Biorad, Richmond, CA)ゲル濾過HPLCカラ
ム(1−300×103 ダルトンの蛋白質を分画)で精
製する。溶出した液の放射活性はインラインディテクタ
ー(ベックマン、モデル170;Beckman, Fullerton,
CA)でモニターし、全蛋白質量はクラトススペクトロフ
ロー575ディテクター(Kratos, Mawah, N. J.)を用
いてOD280 で測定する。OD28 0 と放射活性の一致し
た単一の125 I−1B4のピークがインジェクション後
約6分で30秒溶出する。生成物の比放射活性約10μ
Ci/μgで97−99%のカウントが10%トリクロ
ロ酢酸で沈殿する。この放射ラベルした抗体の結合はヒ
トPMNで評価するが、このPMNは不連続フィコール
/ハイペーク(Hypaque)勾配(English, D.およびAnder
son, B. R., J. Immunol. Methods 5: 249-255, 1974)
で精製し、約100ng/mlのホルボールミリステー
トアセテートで約37℃、約20分間活性化する(Lo
ら, J. Exp. Med. 169 : 1779-1793,1989)。PMN表
層上のCD18分子に対する抗体の親和性を測定するに
は、約1×105 個の活性化PMNを、段階濃度のラベ
ルしてない1B4抗体(約10-7−10-15 M)の存在
下において約1.3ngの125 I−1B4(2.8x1
0-11 M)を含む結合バッファー中にて4℃で約1時間
かき混ぜながらインキュベートする。この結合バッファ
ーはハンクスバランスソルト溶液などで、約20mMヘ
ペス(pH7.2)、約0.14ユニットのアプロチニ
ン(シグマ)と約2%ヒト血清アルブミンを含む。細胞
に結合した1B4は結合しなかった抗体から分離するた
め0.5Mシュークロースクッションを通過させる遠心
(4,800×gで3分間)を行なう。遠心管をドライ
アイスの上で凍結し、先端を切って、LKBガンマカウ
ンターでカウントする。125 I−1B4に対する抗CD
18抗体のIC50は、4変数フィッタープログラム(Ro
dbard, D, Munson, P, J.,および Delean,「医学におけ
るラジオイムノアッセイと関連手法」国際原子力機関、
ウイーン、第1巻 469-504、 1978)を用いて算出する。
CD18リガンドに対する「化粧張り」抗CD18抗体
の親和性は、同様な方法でネズミ125 I−m1B4抗体
と捕獲ELIZAで測定した段階量のラベルしてない
「化粧張り」抗CD18抗体を用いて測定する。結合ア
ッセイの結果を図13に示す。この結果は「化粧張り」
重鎖と軽鎖組換え1B4抗体の親和性はネズミ1B4モ
ノクローナル抗体のそれと同等であることを示す。この
結果は、ヒトのアイソタイプと推定できる抗体が、ネズ
ミの原抗体からそのフレームワーク残基に多くの点変異
を導入する遺伝子組換えによって構築され、その抗原に
対する親和性を失うことなくヒトカッパおよびガンマ4
定常ドメインに融合した形で発現し得ることを示すもの
である。この結果から、フレームワーク領域内での点変
異は、ネズミ1B4軽鎖及び重鎖CDRの状態に変更を
与えるものではないと言える。ネズミモノクローナル抗
体の中に見られる相補性領域と置き換えられた相補性領
域を含む組換えヒト抗体を構築した多くのこれまでの例
において、リガンドすなわち抗原に対する親和性が失わ
れるという結果を招いている。すなわち、ネズミの相補
性領域のトランスミューテーションは可能ではあるが、
親和性の維持は保証されていなかったのである。上述の
手法は、フレームワーク領域および個々のフレームワー
ク領域のアミノ酸の性質に細心の注意を払うことによ
り、1987年9月30日に公開されたWinterの欧州特
許出願第239400号において採用されている「遺伝
的に」ヒト型のフレームワークへのCDRの移送(「ヒ
ト化」)に伴うその親和性の喪失をもたらさずに、「ヒ
ト化」を達成し得ることを示すものである。たとえばネ
ズミ1B4のCDRと適合するヒトフレームワーク配列
を特定するために、ネズミ1B4のフレームワークと高
度の配列相同性を有するヒトフレームワークを特定す
る。配列相同性は同一の残基および進化論的に保存され
るアミノ酸置換を用いて測る。相同性の検索はCDR配
列を除去したネズミ1B4フレームワーク配列を用いて
行う。この配列を用いて、多数のソースに由来するヒト
免疫グロブリン配列のデータベースを検索する。高度の
配列相同性を有する配列については、個々にそのヒト化
フレームワーク配列としての可能性を検討する。このよ
うにしてネズミCDRにその本来のネズミフレームワー
クと最も類似した構造を与えるヒト相同物を選択し、
「化粧張り」可変領域の構築のための鋳型とする(図1
6)。十分な相同性を有するヒトフレームワークが集め
られた配列の中から特定されなかった場合には、ヒトゲ
ノムDNAから強く関連する可変領域の群を遺伝子組換
え技術によって単離してもよい。すなわち、変性した
5’上流オリゴデオキシヌクレオチドプライマーを種々
のヒトFR1領域の各アミノ末端の中で保存されている
配列から設計し、CDRをヒトの配列中に移送したいと
思っているネズミモノクローナル抗体から決定されるF
R配列の様式を借りた変性3’下流オリゴデオキシヌク
レオチドプライマーと対にしてもよい。次に、これらの
プライマー対を用いてこれらにはさまれるDNA配列を
ヒトゲノム鋳型からPCR増幅する。そして得られるD
NAをクローニングすれば、個々のものから誘導される
DNA配列は種々のネズミ関連ヒト可変領域を記述する
こととなる。フレームワーク残基における体性変異が少
ないこと、およびマウスとヒトとの間のアミノ酸配列が
保存されていることが、このアプローチを可能にしてい
る。
ーナル抗体のCDR残基を含み、原ネズミモノクローナ
ル抗体の特異性および親和性が完全に保持された、完全
な組換えヒトIgG4抗体の構築が、ここに開示され
る。ヒトカッパー軽鎖定常領域と融合したヒトLEN配
列から誘導される「化粧張り」軽鎖フレームワークの構
築は上記に述べられている。CDR配列を欠いたネズミ
可変領域フレームワーク配列を用いて完全なヒト可変領
域配列のデータベース検索を行う。次いで、ネズミフレ
ームワーク配列と最もよく類似するヒト配列を個々に解
析し、それらの配列のネズミフレームワーク領域との合
同性および相似性を決定する。ネズミ1B4の場合に
は、このような配列として、1B4重鎖配列と高度の相
似性および合同性を有するという理由で選択される「G
al」があるが、これに限定されるわけではない。Ga
l FRはネズミ1G4に対して85%の相似性と79
%の合同性を有することがわかった。これらの値は進化
論的に保存されたアミノ酸置換についてのDayhoffの相
同性マトリクスに基づくものである(R. M. Schwartz,
M. O. Dayhoff、タンパク質の配列および構造地図(M.
O. Dayhoff編、NationalBiomedical Research Foundati
on, Washington, DC [1979])中) (図16)。ヒトの
ものに見せかけたフレームワーク配列中にネズミ重鎖C
DRをコードする組換えDNAを調製するには、以下の
手順を行う。10個の短いオリゴデオキシヌクレオチド
の組を合成する。各対をそれぞれ別のPCR反応でネズ
ミ1B4重鎖可変領域を表すDNA鋳型と組み合わせ、
ネズミハイブリドーマ1B4のRNAのPCRにしたが
って上記のように増幅し単離する。かくして、約50ピ
コモルの各プライマー対を、ネズミ1B4重鎖可変領域
を表す約10ngのプラスミドDNA、約2.5単位の
TaqDNAポリメラーゼと組み合わせて、約25サイ
クルのPCR増幅を行う(1サイクル:94℃で1分;
55℃で1分;72℃で1分)。5つの反応の生成物
(図12)はシグナルペプチドをコードする領域に始ま
り可変領域をコードするドメインとIgG4定常領域配
列の間に位置する3’イントロン配列に終わり、「化粧
張り」可変領域フレームワークを作るための所望の点変
異を含む、1B4重鎖可変領域の一部をコードする。こ
れらの5つの断片をアガロースゲル電気泳動で精製し、
各DNA断片約10ngを末端オリゴデオキシヌクレオ
チドプライマー(A1およびA2、図9)およびTaq
DNAポリメラーゼと組み合わせる。組み合わせた断片
をPCR増幅する(94℃で2分;55℃で2分;72
℃で2分を25サイクル)。5つの断片の相補性末端の
ために、ポリメラーゼ連鎖反応の重合/変性/重合のサ
イクルにより、組み合わされた配列の形成とそれに続く
増幅が生ずる。25サイクルの増幅に続き、組み合わさ
れた0.8Kb断片アガロースゲルから電気泳動で精製
し、制限酵素SpeIおよびBamHIで消化する。ア
ガロースゲル電気泳動に続き、精製DNA断片を重鎖発
現ベクターp8958に結合し、このベクター中に存在
するキメラ可変領域を置き換える。各「化粧張り」可変
領域は、その関連するヒト定常領域とともにpD5系発
現ベクタープラスミド中に存在し、293細胞及びCV
1P細胞中に一緒にトランスフェクションされ、トラン
スフェクション後48時間で調整培地中に組換えヒト抗
体が見いだされる。この「化粧張り」組換え抗体はプロ
テインAクロマトグラフィーで単離する。活性化ヒトP
MN表面上に示されるこの抗体のCD18リガンドに対
する親和性を原ネズミ1B4モノクローナル抗体と比較
する。図17から、各抗体は6つのCDRからなる同じ
組を異なるフレームワークドメイン中に含むが、それら
は同一のリガンド親和性を示すことがわかる。すなわ
ち、抗体分子の親和性は表面に露出した可変領域フレー
ムワーク残基に依存せず、CDRがもたらす適正な構造
はむしろ埋没した内部活性残基によって大きく影響され
る。原ネズミモノクローナル抗体は約1.0〜約0.7
nMのIC50値を示し、「化粧張り」分子も似たような
IC50値を示す。
テグリン、βサブユニット)を表層に発現できる白血球
が、炎症を起こした箇所、あるいはその細胞の流入の結
果炎症がおきる組織部位や器官に流入即ち遊走すること
を阻止する方法に関するものである。本発明の方法の標
的である炎症とは、病原性微生物、たとえばグラム陰性
・陽性の細菌、寄生虫や真菌の感染の結果起こる可能性
がある。この応答はまたウイルスや、非感染性の原因た
とえば外傷、心筋梗塞や脳卒中にともなうreprefusion
、外来性抗原に対する免疫応答や自己免疫反応によっ
ても誘導される。組換えヒト抗CD18抗体は、肺、中
枢神経系、腎臓、関節、心内膜、目、耳、皮膚胃腸管お
よび泌尿器系における炎症の治療に有用である。組換え
ヒト抗CD18抗体が治療剤として有用である疾患の状
態は、髄膜炎のように活発な感染がが体内に存在する感
染性疾患、抗原の沈着による慢性あるいは急性二次炎
症、その他たとえば脳炎、関節炎、ブドウ膜炎、大腸
炎、糸球体腎炎、皮膚炎、乾癬、敗血症および/または
外傷に伴う呼吸困難症候などを包含するがこれに限定さ
れない。組換え抗ヒトCD18抗体に反応性を有する他
の炎症性疾患としては、これに限定されないが、急性お
よび遅延性過敏症;移植片対宿主疾患などのT細胞およ
び/またはマクロファージ接着/認識がからむ免疫異常
や状態;悪性貧血のような一次自己免疫状態;I型糖尿
病のような自己免疫状態に関連した感染;リューマチ性
関節炎における発赤拡大;白血球の血管外遊出が関与す
る多発性硬化症のような疾患;上にあげた二次感染のあ
るものを含む、抗原−抗体複合体により引き起こされる
疾患;免疫抑制;移植拒絶などがある。成人の呼吸困難
症候、再灌流傷害のような有害なショックや外傷による
炎症状態、白血球悪液質や転移による疾患状態も本発明
の範囲に含まれる。本発明はまた化学療法で治療用薬物
注入する際に内皮の医原性開口部での白血球−内皮付着
を阻害して白血球の侵入を防ぐ、あるいは患者から白血
球を採取するのを促進する、などの診断・治療の目的に
も応用できる。
性のある断片は上に述べた疾患を治療するために用いる
ことができる。活性のある断片とは、F(ab’)、F
abその他CD18抗原に結合できるいかなる断片も包
含するものである。組換えヒト抗CD18抗体は、非感
染性疾患にたいしては単独で、感染性疾患の治療の場合
には上に述べた理由から抗生物質あるいは他の抗感染薬
と組み合わせて投与することができる。投与は一般に生
理的に許容される媒体または医薬的担体中の抗体と他の
物質を包含するものである。生理的に許容される媒体ま
たは医薬的担体としてはこれに限定されないが、生理食
塩水、リン酸緩衝生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水グ
ルコース、緩衝食塩水などがある。抗体および他のどん
な抗感染薬も非経口的に投与される。静脈内、筋肉内、
皮下、腹腔内注射または投与が含まれる。投薬形態中の
抗体と混合物の量は治療する疾患の状態によて異なる。
投薬形態中に使用されるヒト抗CD18の量は約1mg
から100mgがこのましい。抗体は、医療にあたる医
師により決められた毎日またはそれより少ない頻度で投
与される。以下の実施例は本発明を説明するものであっ
てそれに限定するものではない。
鎖のそれに改変されたネズミ軽鎖フレームワークからな
っている抗体を製造した。同様に重鎖の可変領域は、ネ
ズミの重鎖を点突然変異でネズミの露出アミノ酸残基か
らヒトの露出残基に置換したものから得た。軽鎖のヒト
フレームワーク部はヒトのミエローマ蛋白質LENに由
来したものである。CD18(LFA−1、Mac−
1、およびp150.95を含む白血球インテグリンB
ー2ファミリーのβサブユニット)に結合するネズミの
モノクローン抗体1B4からのCDRおよびフレームワ
ークの配列は以下のようにして決定した。1B4と命名
されたハイブリドーマはブダペスト条約により国際寄託
機関であるアメリカンタイプカルチュアコレクション
(メリーランド州、ロックヴィル、パークローンドライ
ブ12301)に寄託されている。その生存は1989
年6月6日に確認され、ハイブリドーマはHB1016
4の番号を受けた。この抗体がκ軽鎖を有するIgG2
aであることはすでに決定されている(Wrightら、Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA 80:5699-5703 (1983)) 。グ
アニジウムイソチオシアナートによる細胞の可溶化を含
む標準法を用いて1B4ミエローマ細胞から全RNAを
抽出した(Chirgwinら、Biochem. 18: 5294-5299(197
9)) 。アプライドバイオシステムズ(Applied Biosyste
ms)381ADNAシンセサイザーを用い、標準的なホ
スホロアミダイド手法により、ネズミκ軽鎖可変領域の
フレームワーク1とκ軽鎖定常領域の間にある配列、あ
るいはネズミIgG2a重鎖可変領域のフレームワーク
1と重鎖定常CH1領域の間にある配列を有する縮重オ
リゴヌクレオチドプライマー(図8)のセットを合成し
た。デオキシオリゴヌクレオチド(オリゴ)を樹脂から
はずすには、濃NH4 OHで処理し、脱塩はメーカーの
指示どおりNAP−5カラム(ファルマシア)上H2 O
で溶出して脱塩する(オリゴが45塩基より短い場
合)、またはOPCカラム(アプライドバイオシステム
ズ)と20%アセトニトリル溶出を用いて行なった。全
RNA(2μg)は30分間42℃で、最終20μlの
バッファー(50mMトリスHCL、pH8.3、75
mMKCl、3mMMgCl2 、10mMDTT、20
ユニットRNAsin(ファルマシア))中のモロニー
MLV逆転写酵素(200ユニット、BRL)、10pm
ole の軽鎖と重鎖の定常領域相補鎖プライマーを用いて
逆転写した。逆転写酵素を95℃、5分で熱失活させ、
反応系中に100μlのPCRバッファー(10mMト
リスHCl、pH8.3、50mMKCl、1.5mM
MgClMgCl2 、0.01%ゼラチン、200μM
の各dNTP)、各プライマーのペアをそれぞれ50p
mole、2.5ユニットのTaqポリメラーゼ(パーキン
エルマー/シータス)を含むように調整した。ポリメラ
ーゼ連鎖反応(PCR)増幅は、Saiki ら、Science 23
0:1350-1354(1985) やその他(Mullisら、Cold Spring
Harbour Symp. Quant. Biol. 51: 263-273(1986)、Dawa
sakiトWang 、 「PCRテクノロジーその原理とDNA
増幅への応用」(Ehrlich 編、Stockton Press, NY 89-
97 ヘ゜ーシ゛ (1989)) 、同掲Tungら、99-104ヘ゜ーシ゛ ) に基
本的にしたがって行なった。DNAサーマルサイクラー
(パーキンエルマーシータス)によりサイクル(94℃
2分、55℃2分、72℃2分)を45回行なったのち
予期される400塩基対(bp)のDNAフラグメント
をゲル精製した。DNAをT4ポリヌクレオチドキナー
ゼ(ベーリンガーマンハイム)を用いて末端リン酸化を
行なってから平滑末端化中間体プラスミド(pSP7
2、プロメガ)にサブクローニングした。E.coli
をDH5で形質転換し、50μg/ mMアンピシリンを
含むLB寒天培地上に撒き、Maniatisらの方法(「分子
クローニング実験技術」コールドスプリングハーバーラ
ボラトリー、コールドスプリングハーバー、NY、19
82年)にしたがって培養し、これらのPCR増幅配列
を含む複数のクローンを単離した。これらの菌からプラ
スミドDNAをBirnboinとDolyの方法(Nucleic Acid r
es. 7:1515(1979)により抽出し、Sequenase (商標、Un
ited States Biochemicals )とT7およびSP6特異的
シークエンシングプライマー(ベーリンガーマンハイ
ム)を用い、メーカーの指示通り、2重鎖プラスミドD
NAのDNA配列を決定した。ネズミIgG2aの重鎖
可変領域を表わす単一のDNA配列が得られた。κ軽鎖
可変領域についても同様であった。「化粧張り」ネズミ
軽鎖を最終的に発現させるため、1B4のCDRを移植
したヒトLENフレームワークからなる鋳型内のいくつ
かの残基をネズミ1B4軽鎖フレームワーク中にある対
応する残基で置換した。ヒトLEN可変領域の残基をM
Ab1B4に特有な残基で置換するのは次のように行な
った。PCR増幅で4つのDNAフラグメントを作るの
に必要なプライマーである8個のオリゴヌクレオチド
(図9)を合成した。末端にあたるオリゴヌクレオチド
を除く全部のオリゴヌクレオチドにMAb1B4軽鎖可
変領域フレームワーク残基に対応する配列を組み込んで
点突然変異を起こさせたが、少なくとも5’末端相補性
部分の15塩基は変化させなかった。(図10参照)。
適切なプライマーのペア(各50pmole)を、すで
に1B4CDRを移植してあるLENフレームワークを
含んだプラスミドDNA10ng、2.5ユニットのT
aqDNAポリメラーゼ、PCR反応成分およびバッフ
ァーと一緒にして25回のPCR増幅を行なった(1サ
イクルは94℃1分、55℃2分、72℃2分)。4回
の反応の産物をアガロースゲル電気泳動で精製し、各フ
ラグメント10ngを末端オリゴデオキシヌクレオチド
プライマーのペア(アンプリファイヤ)(図9および1
0)、TaqDNAポリメラーゼ、PCR反応成分とバ
ッファーを一緒にして再結合フラグメントを上に述べた
様に25回増幅させた(図10参照)。増幅したDNA
をHindIIIとXbaIで切断したのち、アガロー
スゲルで精製し、ヒトκ軽鎖定常領域を含んでいる中間
ベクターpSP72(プロメガ)にサブクローニングし
た。ヒトB細胞系(GM01018A;NIGMSヒト
遺伝子突然変異細胞保存施設、医学研究所(Insutitute
for Medical Research, Camden, N.J. 08103))から精
製したDNA(1μg)を鋳型とし、図8に記載された
オリゴデオキシヌクレオチドプライマーと共にPCR増
幅をおこない、ヒトκ軽鎖定常領域にたいするスプライ
スアクセプターとエキソンと3’非翻訳領域の一部を有
する920塩基体フラグメントを増幅した。PCRプラ
イマーのペアは、κ定常領域配列(Hieterら、Cell 22:
197-207 (1980) )に基づいて選択した。PCR産物は
アガロースゲル電気泳動で精製し、BamH1エンドヌ
クレアーゼで切断し、あらかじめBamH1で線状にし
たpSP72(プロメガ)中にサブクローニングした。
り」軽鎖可変領域と、ヒトDNAのPCR増幅で得られ
たヒトκ定常領域の両方を含むsSP72中間ベクター
を表わす個々のクローンを用いて、「化粧張り」軽鎖可
変領域のDNA配列を確認した。組換え抗体の「化粧張
り」重鎖の可変領域部分は、ガンマ4サブタイプのヒト
定常領域に融合させた点突然変異ネズミ1B4重鎖可変
領域から得られた。これはフラナガンとラビッツが作成
したラムダライブラリ(Nature, 300:709-713(1982))
から入手した。「化粧張り」重鎖可変領域は5個のDN
Aフラグメントすなわち、シグナル配列、1B4重鎖可
変領域の変異を起こした部分3個、イントロン配列1個
から構成される(図12)。前にネズミ1B4CDRと
フレームワーク配列を決定するのに用いたネズミ1B4
重鎖可変領域を含むプラスミドDNA10ngを鋳型と
したPCR増幅でこれら5つのフラグメントを作成する
のに必要なプライマーとして、オリゴデオキシヌクレオ
チドプライマーのペアを合成した。5個のフラグメント
の増幅は、すでに述べた4個の軽鎖可変領域フラグメン
トと同じように行なった。アガロースゲルで精製した産
物(各10ng)は末端プライマーペア(図9)と一緒
にし、このPCRで作られたインビトロ組換え鋳型を、
上述した「化粧張り」軽鎖可変領域からなるフラグメン
トを組み替えるのに用いた標準的方法を用いて増幅し
た。この組換え産物はHindIIとBamH1で切断
してアガロースゲルで精製した後、同様に切断した発現
ベクターにサブクローニングした。それぞれの細菌クロ
ーンを生育させてからDNAを取り、シークエナーゼ
(Sequenasa)( 商標)とT7とSP6特異的シークエン
シングプライマーを用いてDNA配列を決定し、再構築
可変領域とその隣接配列を確認した。
AT84に由来した6.7KbHindIII断片とし
て中間ベクターpSP728(プロメガ)のHindI
II部位にサブクローニングされている。このプラスミ
ドを鋳型DNAとして用い、上で述べた標準的PCR増
幅手順と図8にしめしたプイラマーを用いてδ4定常領
域の短縮形を得た。真核生物発現ベクターは免疫ブロブ
リンの重鎖をネオマイシン(G418)(Rothstein と
Rznikoff、Cell 23:191-199 (1981)) 耐性マーカーを有
するプラスミドから読み取らせ、軽鎖をヒグロマイシン
B耐性マーカー(Gritz とDavies、Gene 25: 179-188
(1983)) を有するプラスミドから読み取らせる様に構
築した。これらのプラスミドは薬剤耐性部分を除けば同
一である。
D5真核生物発現ベクター(Berkner とSharp, Nucl. A
cids Res. 13: 841-857 (1985)) であり、これはアデノ
ウイルスの複製起点、SV40エンハンサー領域、アデ
ノウイルス主要後期プロモーター、アデノウイルス23
分節系リーダー、アデノウイルス第3リーダーと免疫グ
ロブリン遺伝子座に由来する3’スプライスアクセプタ
ーからの5’スプライスドナー、マルチクローニング部
位、およびSV40の後期ポリアデニル化シグナルを含
む。複製の起点はEcoR1とKpnIで切断して除
き、EcoR1/BamH11.8Kbフラグメントと
したneo選択マーカー遺伝子(プラスミドpCMVI
E−AK1−DHFR(Silberklang ら、「最新動物細
胞工学手法」Speir ら編、Butterworth, U.K.(1987))、
およびIg重鎖エンハンサー(ヒトDNAを鋳型とし、
図8にあげたオリゴヌクレオチドプライマーを用いたP
CR増幅フラグメントをBg1IIとKpnIで切断)
を組み込んだ。得られた発現ベクターはネオマイシン遺
伝子の転写に対応するTKプロモーターの小部分が欠け
ていることが見出された。これはEcoR1部位に0.
14kbのPCR増幅断片(CMVIE−AK1−DH
FR DNAから図8に挙げたプライマーを用いて得
た)を挿入することにより入れ替えた。得られた重鎖発
現ベクターはついでHindIIIとXbaI部位を除
去した。このネオマイシン選択性ベクターはヒグロマイ
シンB選択性発現ベクター(図15)に改変するには、
ネオマイシン耐性カセットをまずEcoR1で切断した
のち、DNAポリメラーゼで5’突出末端を埋め、つい
でSalIで切断して除去した。1.9kbヒグロマイ
シンB発現カセット[ヒグロマイシンB遺伝子とそれに
隣接するTKプロモーターとTKポリアデニル化シグナ
ル(Gritz とDavies, Gene 25: 179-188 (1983) で、プ
ラスミドpLG9−中1.9kbBamH1フラグメン
トとして存在]は、プラスミドpAL−2からBamH
1切断により取り出し、中間ベクターpSP72(プロ
メガ)のBamH1部位にサブクローニングした。この
ベクターからSmaIとSalI切断によりヒグロマイ
シンBカセットを取り出し、先に述べたように平滑末端
とSAlI末端を持つように線状化した発現ベクターに
クローン化した。
シストロンをpSP72中間ベクターからヒグロマイシ
ン選択性真核生物発現ベクターに移すことにより行なっ
た(図11)。v1B4VK/pSP72中間体ベクタ
ーをSpeIとClaIで切断し、アガロースゲル電気
泳動で精製して得られた1.5kbのDNAフラグメン
トを前以て同じ2つ制限酵素で切断しアガロースゲルで
精製した線状化発現ベクターに連結した。1B4「化粧
張り」重鎖発現真核生物ベクターは、前以て1B4重鎖
のキメラ体を発現するように構築されたベクターから1
段階で構築された(図13)。PCR増幅で作成された
「化粧張り」重鎖可変領域(図12)はHindIII
とBamH1で切断した。アガロースゲルで精製された
0.8kbフラグメントを、HindIIIとBamH
1で切断しアガロースゲルで精製したpD5/IgHエ
ンハンサー/Neo/1b4VH−短形C−ガンマ4発
現ベクターのHindIIIとBamH1部位に連結し
た(図13)。可変および定常双方の領域を有するトラ
ンスフォーマントが同定された。プラスミドDNAを培
養により増やし(Maniatis ら、上掲)して精製し、受
容体ほ乳動物細胞にトランスフェクトさせた(Maniatis
ら、上掲、Birbion とDoly, 上掲)。
κ軽鎖をコードするプラスミドを同量づつ(10μ
g)、標準的リン酸カルシウム沈降法によりヒト293
細胞とアフリカミドリザル腎臓CV−1P細胞にトラン
スフェクトさせた。細胞の培養上清をヒトκ軽鎖を含む
IgG4免疫グロブリンが分泌されているかどうかにつ
いて捕獲ELIZA(以下に説明)を用いてアッセイし
た。1つのELIZA法が馴致(conditioned)ほ乳動物
細胞培養液中に発現された1B4組換え抗体の量を定量
するために開発された。Immulon 2(Dynatech Labs)96
穴プレートを、0.1MNaCO3 バッファー(pH
8.2)中5μg/mlのマウス抗ヒトκ鎖定常領域モ
ノクローナル抗体(カタログ番号MC009、The Bind
ing Site Inc., San Diego, CA) で一晩コーティング
し、0.1MNaCO3 中1%ウシ血清アルブミンで1
時間25℃ブロックした。それに続くすべての工程後、
リン酸バッファー食塩水(PBS)で洗浄した。ついで
ウェルは、組換え抗CD−18抗体を含む馴致培地と、
既知量のヒトIgG4(ヒトIgG4ミエローマ血清
(カタログ番号BP026、The Binding Site Inc.)
からプロテインA−セファロース(Pharmacia Fine Che
micals) クロマトグラフィで精製した。全サンプルは
0.05%Tween -20 を含むPBSで希釈した。100
μlづつ3連で37℃1時間インキュベートした。10
ng/mlから100ng/mlの間のIgG4濃度を
用い標準検量曲線を作成した。結合させ完全に組み立て
られたヒトIgG4(本来のIgG4あるいは組換え
「化粧張り」1B4ヒトIgG4構築体)は、アルカリ
ホスファターゼを結合させたマウス抗ヒトIgG4Fc
モノクローナル抗体(カタログ番号05−3822、Zy
nmed Laboratories, Inc.)の1:500希釈液(1%B
SAを含むPBS)100μlにより検出された。37
℃1時間インキュベートしてから洗浄し、結合した酵素
複合体の量は、全サンプルを1mg/ mlのp−ニトロ
フェニルホスフェートの0.1M2,2アミノメチルプ
ロパンジオールバッファー(pH10.3)溶液と、2
5℃30分間インキュベートして検出した。ウェルの吸
光度は、405nmにセットしたUV Max ELI
ZAプレートリーダー(Molecular Devices)により測定
した。全部の上清はこの免疫グロブリンを含有したが、
その量は異なっていた。トランスフェクトされた293
細胞により生産された抗体はプロテインAクロマトグラ
フィにより濃縮した。上で説明した捕獲ELIZAによ
り定量された組換えヒト「化粧張り」抗CD18抗体の
各種濃度を用いて、活性化されたヒト多型白血球(PM
N)上のCD18リカンドに放射ラベルしたネズミ1B
4が結合するのと拮抗させた。種々の抗CD18抗体構
築体の親和性は、刺激を受けたヒトPMNに対する125
I−m1B4との競合的可溶性結合アッセイを用いて決
定した。精製ネズミ抗CD18モノクローナル抗体(5
0μg;m1B4)はクロラミンTを用いてヨード化し
た(Hunter, W. M. とGreenwood, F. C., Nature194: 4
95-496, 1962) 。 放射ラベルした抗体は、0.1Mリ
ン酸バッファー(pH7.0)で平衡化したBio−S
il TSK250( Biorad, Richmond,CA) ゲル濾過
HPLCカラム(1−300×103 ダルトンの蛋白質
を分画)で精製した。溶出した液の放射活性はインライ
ンディテクター(ベックマン、モデル170;Beckman,
Fullerton, CA) でモニターし、全蛋白質量はクラトス
スペクトロフロー575ディテクター(Kratos, Mawah,
N. J.) を用いOD280 で測定した。OD280 と放射活
性の一致した単一の125 I−m1B4のピークがインジ
ェクション後約6分で30秒溶出した。生成物の比放射
活性は約10μCi/μgで97−99%のカウントは
10%トリクロロ酢酸で沈殿した。この放射ラベルした
抗体の結合は、ヒトPMNで評価するが、このPMNは
不連続フィコール/ ハイペーク(Hypaque)勾配(Englis
h, D. とAnderson, B.R., J. Immunol.Methods 5: 249^
255, 1974) で精製し、100ng/mlのホルボール
ミリステートで37℃、20分間活性化した(Loら、J.
Exp. Med. 169: 1779-1793, 1989)。PMN表層上のC
D18分子に対する抗体の親和性を測定するには、約1
×105 個の活性化PMNを、段階濃度のラベルしてな
いm1B4抗体(10-7−10-15 M)の存在下で1.
3ng125 I−m1B4(2.8x10-11 M)を含む
結合バッファー中で4℃、約1時間かき混ぜながらイン
キュベートした。この結合バッファーはハンクスバラン
スソルト溶液などで、20mMペペス(pH7.2)、
0.14ユニットのアプロチン(シグマ)と2%ヒト血
清アルブミンを含む。細胞に結合した1B4は結合しな
かった抗体から分離するため0.5Mシュークロースク
ッションを通過させる遠心(4,800×g,3分間)
を行なった。遠心管をドライアイスの上で凍結し、先端
を切って、LKBガンマアウンターでカウントした。
125 I−m1B4に対する抗CD18抗体のIC50は、
4変数フィッタープログラム(Rodbard, D, Munson, P,
J.,と Delean,「医学におけるラジオイムノアッセイと
関連手法」国際原子力機関、ウイーン、第1巻 469-50
4、 1978)を用いて算出した。CD18リガンドにたい
する「化粧張り」抗CD18抗体の親和性は、同様な方
法でネズミ125 I−m1B4抗体と捕獲ELIZAで測
定した段階量のラベルしてない「化粧張り」抗CD18
抗体を用いて測定した。結合アッセイの結果を図17に
示す。この結果は「化粧張り」重鎖と軽鎖組換え1B4
抗体の親和性はネズミ1B4モノクローナル抗体のそれ
と同等であることをしめす。
は各20μgのプラスミドを用い、2mlのカルシウム
ホスフェート沈降溶液を調製してCV1Pサル腎臓細胞
中にコトランスフェクトされた。CV1P細胞の入った
100mm培養皿を覆う培地中にこの1mlを入れ、3
7℃で4時間後、培地を15%グリセロールを含む1×
HBS(Hepes buffered salts) 1mlと交換した。3
分間のグリセロールショック後に、10mlのPBSを
加え、細胞単層を吸引し10mlのPBSで一介洗浄
し、1ml当たり200μgのヒグロマイシンBと80
0μgのG418を含む新しい培地(DMEM+10%
熱非動化新生子牛血清)を加えた。クローニングシリン
ダー(Fishney,「動物細胞培養」Alan R. Liss, Inc.
N.Y. 1983)を用いて個々のコロニーを単離してから、コ
ロニーを増殖させて生産性を試験した。#11と#48
の2つのコロニーがその発展と究極のアクセスを認める
に十分な量のv1B4を発現していることが見出され
た。
−ク残基の側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVHサブグル
−プにおけるこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を
示す。
−ク残基の側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVHサブグル
−プにおけるこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を
示す。
−ク残基の側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVHサブグル
−プにおけるこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を
示す。
側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVλサブグル−プにおけ
るこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を示す。
側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVλサブグル−プにおけ
るこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を示す。
残基の側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVκサブグル−プ
におけるこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を示
す。
残基の側鎖の溶媒暴露及び種々のヒトVκサブグル−プ
におけるこれらの位置で最もしばしば生ずる残基を示
す。
ネズミIgG2a重鎖可変領域をコ−ドするDNAを単
利するに使用するプライマ−を示す。短鎖IgG4重鎖
を生ずるためのPCRプライマ−として使用したオリゴ
デオキシヌクレオチドである。ネオマイシン耐性遺伝子
の発現を促進するため、チミジンキナ−ゼ(TK)プロ
モ−タ−を再工作するためのPCRにおいて使用したオ
リゴデオキシヌクレオチドである。IgHエンハンサ−
配列をクロ−ン化するためのPCRにおいて使用したオ
リゴデオキシヌクレオチドプライマ−である。ヒトκ軽
鎖定常領域を生ずるためのPCRプライマ−として使用
したオリゴデオキシヌクレオチドである。
築において使用したオリゴデオキシヌクレオチド並びに
ヒトシグナル及びイントロンシ−ケンスがこれらの可変
領域へ融合する必要性を示す。
て使用したPCRレコンビネイト戦略。
域の軽鎖発現ベクタ−への挿入の概略。
て使用したPCRレコンビネイト戦略。
タ−への挿入の概略。
概略。
の概略。
ヒトGal重鎖可変領域並びに”化粧張り”1B4、ネ
ズミ1B4及びヒトLenκ軽鎖可変領域のアミノ酸配
列の完成。
ド)及びレコンビナント”化粧張り”1B4(クロ−ズ
ドダイアモンド)の競争的結合検定。
Claims (12)
- 【請求項1】 a.第一の哺乳類種の可変ドメインのフ
レ−ムワ−クと第二の哺乳類種の可変ドメインとを比較
し;b.第一の哺乳類種に最も密接に対応する第二の哺
乳類種のサブグル−プを決定し;c.第一の哺乳類種の
配列に最も類似する第二の哺乳類種の配列を決定し;
d.第二の哺乳類種のアミノ酸残基と異なる第一の哺乳
類種のアミノ酸残基を、免疫グロブリン表面上に大部分
あるいは完全に現れているアミノ酸を使用して、同定
し;e.相補性決定領域内に無くまたは相補性決定領域
に直接隣接してないこれらのアミノ酸残基のみを同定す
ることを特徴とする免疫グロブリン上の哺乳類種特異的
表面アミノ酸残基における相違を同定する方法。 - 【請求項2】 第一の哺乳類種がマウスである請求項1
記載の方法。 - 【請求項3】 第二の哺乳類種がヒトである請求項1記
載の方法。 - 【請求項4】 第二の哺乳類種のアミノ酸残基と異なる
第一の哺乳類種におけるアミノ酸残基を請求項1記載の
方法により同定した如く最も類似する第二の哺乳類種か
らの対応するアミノ酸残基で置き換えることを特徴とす
る第一の哺乳類種の免疫原性を有する免疫グロブリンを
第二の哺乳類種の免疫原性を有する抗体に変換させる方
法。 - 【請求項5】 第一の哺乳類種がマウスである請求項4
記載の方法。 - 【請求項6】 第二の哺乳類種がヒトである請求項4記
載の方法。 - 【請求項7】 a.第二の哺乳類種の表面アミノ酸残基
と異なる第一の哺乳類種の表面アミノ酸残基を請求項1
に記載した方法により同定した如く最も類似する第二の
哺乳類種の配列からの対応するアミノ酸残基で置換し、
公知の抗原に対して特異性を有する化粧張りした免疫グ
ロブリンをコ−ドするDNA配列を製造し;b.この配
列を宿主細胞と親和性を持つ適当なプロモ−タ−に結合
可能な再製可能な発現ベクタ−に挿入し;c.この宿主
細胞をベクタ−bを使用して形質転換し;d.この宿主
細胞を培養し;e.この宿主細胞培養物から化粧張りし
た免疫グロブリンを回収することを特徴とする方法。 - 【請求項8】 第一の哺乳類種がマウスである請求項7
記載の方法。 - 【請求項9】 第二の哺乳類種がヒトである請求項7記
載の方法。 - 【請求項10】 公知抗原に対して特異性を有する化粧
張りした免疫グロブリンからなる組成物。 - 【請求項11】 化粧張りした1B4抗体をコ−ドする
DNA配列。 - 【請求項12】フラグメントのヒト抗体の免疫原性を示
す化粧張りしたネズミ1B4抗体。
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