JP5674654B2 - プロスタグランジンe2二重可変ドメイン免疫グロブリンおよびその使用 - Google Patents
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Description
本出願は、その内容が参照により本明細書に組み込まれている、2008年7月8日に出願した米国仮出願第61/134,284号および2008年9月11日に出願した米国仮出願第61/191,711号の優先権を主張する通常出願である。
本発明は、少なくとも1つの可変ドメインがプロスタグランジンE2(PGE2)に特異的である、多価および多重特異的な結合タンパク質、それらの製造方法に関し、特に、急性および慢性炎症、自己免疫疾患、癌、疼痛、骨、神経ならびにその他の疾病の診断、予防および/または治療におけるそれらの使用に関する。
2つまたはそれ以上の抗原に結合することが可能な多重特異的抗体などの工学的に作製されたタンパク質が、本分野において公知である。このような多重特異的結合タンパク質は、細胞融合、化学的連結または組み換えDNA技術を用いて作製することが可能である。
本発明は2つまたはそれ以上の抗原に結合することが可能な多価結合タンパク質に関する。本発明は、高い親和性で、2つまたはそれ以上の抗原に結合することが可能な結合タンパク質の新規ファミリーを提供する。
)、クスマウル病またはクスマウル−マイヤー病、ランドリー麻痺、ランゲルハンス細胞性組織球症、網状皮斑、黄斑変性、顕微鏡的多発性血管炎、モルブス・ベヒテレフ(morbus bechterev)、運動ニューロン疾患、粘膜性類天疱瘡、多臓器不全、重症筋無力症、骨髄異形成症候群、心筋炎、神経根障害、神経障害、非A非B型肝炎、視神経炎、骨溶解、卵巣癌、小関節性JRA、末梢動脈閉塞疾患(PAOD)、末梢血管疾患(PVD)、末梢動脈疾患(PAD)、静脈炎、結節性多発性動脈炎(または結節性動脈周囲炎)、多発性軟骨炎、リウマチ性多発性筋痛、白毛症、多関節性JRA、多内分泌欠損症候群、多発性筋炎、リウマチ性多発性筋痛(PMR)、ポンプ後症候群、原発性パーキンソニズム、前立腺癌および直腸癌および造血性悪性病変(白血病およびリンパ腫)、前立腺炎、赤芽球癆、原発性副腎不全、再発性視神経脊髄炎、再狭窄、リウマチ性心疾患、sapho(滑膜炎、アクネ、膿疱症、骨過形成および骨髄炎)、強皮症、続発性アミロイドーシス、ショック肺、強膜炎、坐骨神経痛、坐骨神経痛、シリコーン関連結合組織病、スネドン−ウィルキンソン皮膚症、強直性脊椎炎、スティーブンス・ジョンソン症候群(SJS)、全身性炎症反応症候群、側頭動脈炎、トキソプラスマ性網膜炎、中毒性表皮剥離症、横断性脊髄炎、TRAPS(腫瘍壊死因子受容体)、1型アレルギー反応、II型糖尿病、じんましん、通常型間質性肺炎(UIP)、血管炎、春季結膜炎、ウイルス性網膜炎、フォークト・小柳・原田症候群(VKH症候群)、滲出型黄斑変性、創傷治癒、エルシニアおよびサルモネラ関連関節症を含む群から選択される。
本発明は、2つまたはそれ以上の抗原に結合することが可能な多価および/または多重特異的結合タンパク質に関する。具体的には、本発明は、二重可変ドメイン免疫グロブリン(DVD−Ig)およびその医薬組成物ならびにこのようなDVD−Igを作製するための核酸、組み換え発現ベクターおよび宿主細胞に関する。インビトロまたはインビボのいずれかで、特異的抗原を検出するために本発明のDVD−Igを使用する方法も、本発明によって包含される。
抗体(「Ab」)+抗原(「Ag」)’ Ab−Ag
Ab+Ag→Ab−Ag。
本発明は、1つ以上の標的に結合することが可能な二重可変ドメイン(DVD)結合タンパク質およびこれを作製する方法に関する。一実施形態において、結合タンパク質はポリペプチド鎖を含み、ポリペプチド鎖はVD1−(X1)n−VD2−C−(X2)n(VD1は第一の可変ドメインであり、VD2は第二の可変ドメインであり、Cは定常ドメインであり、X1はアミノ酸またはポリペプチドを表し、X2はFc領域を表し、nは0または1である。)を含む。本発明の結合タンパク質は、様々な技術を用いて作製することが可能である。本発明は、発現ベクター、宿主細胞および結合タンパク質を作製する方法を提供する。
DVD結合タンパク質の可変ドメインは、目的の抗原に結合することができるポリクローナルおよびmAbなど、親抗体から取得することが可能である。これらの抗体は、天然に存在し得、または組み換え技術によって作製され得る。
本発明の実施形態は、DVD−Ig分子において所望される少なくとも1つ以上の特性を有する親抗体を選択することに関する。一実施形態において、所望の特性は、1つ以上の抗体パラメーターから選択される。別の実施形態において、抗体パラメーターは、抗原特異性、抗原に対する親和性、効力、生物学的機能、エピトープ認識、安定性、可溶性、生産効率、免疫原性、薬物動態、生物学的利用率、組織交差反応性およびオルソロガス抗原結合性からなる群から選択される。
治療用mAbの所望の親和性は、抗原の性質および所望の治療的エンドポイントに依存し得る。一実施形態において、サイトカイン−サイトカイン受容体相互作用を遮断するとモノクローナル抗体は高い親和性を有し(Kd=0.01−0.50pM)、従って相互作用は通常高い親和性の相互作用である(例えば、<pM−<nMの範囲)。このような場合、その標的に対するmAbの親和性は、その受容体に対するサイトカイン(リガンド)の親和性と等しくまたはこれより良好であるはずである。その一方で、親和性が低い(>nMの範囲)mAbは、例えば、循環中の潜在的に病原性のあるタンパク質を排除する際に治療的に有効であり得、例えば、A−βアミロイドの循環中の種に結合し、これを隔離し排除するモノクローナル抗体である。他の場合において、部位特異的突然変異導入によって既存の高親和性mAbの親和性を低減することまたはその標的に対する親和性が低いmAbを使用することは、潜在的な副作用、例えば高親和性mAbがその意図する標的をすべて隔離/中和する可能性があることを回避するために使用することが可能であり、それによって、標的とされたタンパク質の(複数の)機能を完全に除去/排除する。この筋書において、低親和性mAbは、疾患の症状(病的または過剰産生レベル)に関与する可能性がある標的の一部を隔離/中和し得、それによって、標的の一部がその正常な(複数の)生理的機能を果たし続けることを可能にする。従って、Kdを低減して用量を調整することおよび/または副作用を低減することが可能であり得る。親mAbの親和性は、細胞表面分子を適切に標的として所望の治療結果を達成することに役割を果たし得る。例えば、標的が、高密度で癌細胞上に、低密度で正常細胞上に発現している場合、低親和性mAbは、正常細胞より腫瘍細胞上で多数の標的に結合し、この結果ADCCまたはCDCを介して腫瘍細胞が排除され、従って低親和性mAbは治療的に望ましい効果を有し得る。従って、所望の親和性を有するmAbを選択することは、可溶性標的と表面標的の両方で重要であり得る。
親モノクローナル抗体の所望の親和性/効力は、所望の治療結果に依存する。例えば、受容体−リガンド(R−L)相互作用では、親和性(kd)は、R−L kdと等しくまたはこれより良好である(pMの範囲)。循環中の病的なタンパク質の単純な排除では、kdは低いnMの範囲であり得、例えば、循環中のA−βペプチドの様々な種の排除である。さらに、kdは、標的が同じエピトープを複数コピー発現するかどうかにも依存し、例えば、Aβオリゴマー中の立体構造エピトープを標的とするmAbである。
モノクローナル抗体は、潜在的にいくつかの機能を果たすことができる。これらの機能のいくつかが表1に列挙されている。これらの機能は、インビトロアッセイ(例えば、細胞を基礎とするアッセイおよび生化学的アッセイ)とインビボ動物モデルの両方によって評価することが可能である。
タンパク質の異なる領域は、異なる機能を果たし得る。例えば、サイトカインの特定の領域は、サイトカイン受容体と相互作用して受容体活性化を引き起こすが、タンパク質の他の領域は、サイトカインの安定化に必要であり得る。この場合において、サイトカイン上の(複数の)受容体相互作用領域に特異的に結合するmAbを選択し、それによってサイトカイン−受容体相互作用を遮断することができる。いくつかの場合、例えば複数のリガンドに結合する特定のケモカイン受容体において、1つのリガンドのみと相互作用するエピトープ(ケモカイン受容体上の領域)に結合するmAbが選択され得る。他の場合において、モノクローナル抗体は、タンパク質の生理機能に直接関与しない標的上のエピトープに結合し得るが、mAbとこれらの領域の結合は、生理機能に干渉し(立体障害)またはタンパク質が機能できないようにタンパク質の立体構造を変化させ得る((リガンドが結合しないように受容体の立体構造を変化させる)複数のリガンドを有する受容体に対するmAb)。サイトカインとその受容体の結合を遮断しないがシグナル伝達を遮断する抗サイトカインモノクローナル抗体も同定されている(例えば、抗IL−18mAbである125−2H)。
抗体を用いた治療的処置は、(典型的に大きい分子量の結果として質量ベースの効力が低いことにより)しばしば数mg/kgの高用量の投与をしばしば必要とする。患者遵守に適応させ、慢性疾患療法および外来患者治療に十分に向けさせるため、治療用mAbの皮下(s.c.)または筋内(i.m.)投与が望ましい。例えば、s.c.投与に最大限望ましい容量は約1.0mLであり、従って、>100mg/mLの濃度が、用量当たりの注射の数を制限するために望ましい。一実施形態において、治療用抗体は一用量で投与される。しかし、このような製剤の開発は、タンパク質間相互作用(例えば、免疫原性リスクを潜在的に増加させる凝集)ならびにプロセシングおよび送達の間の制限(例えば、粘性)によって拘束される。結果として、臨床効力に必要である大きな量および関連する開発の拘束が、抗体製剤の潜在性の完全な利用および高用量の投与計画におけるs.c.投与を制限している。タンパク質分子およびタンパク質溶液の物理化学的特性および医薬的特性、例えば、安定性、可溶性および粘性の特徴が最も重要であることが明らかである。
「安定な」抗体製剤は、この中の抗体が、保存時にこの物理的安定性および/または化学的安定性および/または生物活性を本質的に保持しているものである。安定性は、選択された期間で、選択された温度において測定することが可能である。一実施形態において、製剤中の抗体は、室温(約30℃)もしくは40℃で少なくとも1カ月間、および/または約2−8℃で少なくとも1年間、少なくとも2年間安定である。さらに、一実施形態において、製剤は、製剤の凍結(例えば、−70℃に)および融解後に安定であり、これは以下で「凍結/融解サイクル」と呼ばれる。別の例において、「安定な」製剤は、タンパク質の約10%未満および約5%未満が製剤中の凝集物として存在するものであり得る。
mAbの「可溶性」は、正確にフォールディングされた単量体IgGの生産に相関する。従って、IgGの可溶性は、HPLCによって評価され得る。例えば、可溶性(単量体)IgGは、HPLCクロマトグラフで単一ピークを生じるが、不溶性のもの(例えば、多量体および凝集したもの)は、複数のピークを生じる。当業者は、従って、通常のHPLC技術を使用してIgGの可溶性の増大または低下を検出することができる。可溶性を分析するために使用され得る分析技術のより包括的なリストについて、(Jones,A.G.Dep.Chem.Biochem.Eng.,Univ.Coll.London,London,UK.Editor(s):Shamlou,P.Ayazi.Process.Solid−Liq.Suspensions(1993),93−117.Publisher:Butterworth−Heinemann,Oxford,UK and Pearlman,Rodney;Nguyen,Tue H,Advances in Parenteral Sciences(1990),4(Pept.Protein Drug Delivery),247−301を参照されたい)。治療用mAbの可溶性は、十分な投与にしばしば必要とされる高濃度への製剤化にとって重要である。本明細書において概略を述べるように、>100mg/mLの可溶性が、効率的な抗体投与に適応させるために必要とされ得る。例えば、抗体の可溶性は、初期の研究相において約5mg/mL以上、一実施形態において進行したプロセス科学段階で約25mg/mL以上または一実施形態において約100mg/mL以上または一実施形態において約150mg/mL以上であり得る。タンパク質分子の固有の特性がタンパク質溶液の物理化学的特性、例えば安定性、可溶性、粘性に重要であることは、当業者に明らかである。しかし、当業者は、幅広い様々な賦形剤が、最終的なタンパク質製剤の特徴に有益な影響を及ぼす添加剤として使用され得ることを理解する。これらの賦形剤は、(i)液体溶媒、共溶媒(例えば、エタノールなどのアルコール);(ii)緩衝剤(例えば、リン酸、酢酸、クエン酸、アミノ酸緩衝液);(iii)糖および糖アルコール(例えば、スクロース、トレハロース、フルクトース、ラフィノース、マンニトール、ソルビトール、デキストラン);(iv)界面活性剤(例えば、ポリソルベート20、40、60、80、ポロキサマー);(v)等張性修飾物質(例えば、NaClなどの塩、糖、糖アルコール);ならびに(vi)他(例えば、保存剤、キレート化剤、抗酸化剤、キレート化物質(例えば、EDTA)、生分解性ポリマー、担体分子(例えば、HSA、PEG)を含み得る。
チャイニーズハムスター卵巣細胞(CHO)などの哺乳動物細胞中で効率的に発現されるDVD−Igの生成は、一実施形態において、哺乳動物細胞中でそれ自体効率的に発現される2つの親モノクローナル抗体を必要とする。安定哺乳動物系統(すなわち、CHO)からの生産収率は、約0.5g/Lを上回り、一実施形態において約1g/Lを上回り、別の実施形態において約2−5g/Lまたはそれ以上の範囲であるべきである(Kipriyanov SM,Little M.1999 Mol Biotechnol.12:173−201;Carroll S,Al−Rubeai M.2004 Expert Opin Biol Ther.4:1821−9)。
治療用mAbの投与は、免疫応答の特定の発生(すなわち、治療用mAbに対する内在性抗体の形成)をもたらし得る。免疫原性を誘発する可能性がある潜在的な要素は、親モノクローナル抗体の選択の間に分析すべきであり、DVD−Ig構築前に親モノクローナル抗体を最適化するために、このようなリスクを低減するステップをとることが可能である。マウス由来の抗体は、患者において高度に免疫原性であることが分かっている。マウス可変領域およびヒト定常領域からなるキメラ抗体の生成は、治療用抗体の免疫原性を低減する論理的な次の工程を提示する(Morrison and Schlom,1990)。あるいは、免疫原性は、Riechmann et al.,1988により治療用抗体について記載されているように、マウスCDR配列をヒト抗体フレームワークに移すこと(再成形/CDR移植/ヒト化)によって低減することが可能である。別の方法は、「再表面化」または「ベニヤ化」と呼ばれ、げっ歯類可変軽および重ドメインから開始し、表面到達可能なフレームワークアミノ酸のみがヒトのものに変化しているが、CDRおよび埋まっているアミノ酸は親げっ歯類抗体由来のままである(Roguska et al.,1996)。別のタイプのヒト化において、CDR全体を移植する代わりに、1つの技術は、抗体とその標的の結合に関与するCDR残基のサブセットとして定義される「特異性決定領域」(SDR)のみを移植する(Kashmiri et al.,2005)。これは、抗体−標的複合体の入手可能な三次元構造の分析または(どれが標的と相互作用するかを決定するための)抗体CDR残基の突然変異分析によるSDRの同定を必要とする。あるいは、完全なヒト抗体は、マウス、キメラまたはヒト化抗体と比較して低減された免疫原性を有し得る。
所望のインビボ効力を有するDVD−Ig分子を生成するために、組み合わせて得られた場合に同様に所望のインビボ効力を有するmAbを生成および選択することが重要である。しかし、いくつかの場合において、DVD−Igは、2つの別々のmAbを組み合わせて達成することができないインビボ効力を示し得る。例えば、DVD−Igは、2つの標的を近接させることができ、このことは、2つの別々のmAbを組み合わせて達成することができない活性につながる。さらなる望ましい生物学的機能は、B3節において本明細書に記載されている。DVD−Ig分子において望ましい特徴を有する親抗体は、薬物動態t1/2;組織分布;可溶性対細胞表面標的;および標的濃度−可溶性/密度−表面などの因子に基づいて選択することが可能である。
所望のインビボ組織分布を有するDVD−Ig分子を生成するために、一実施形態において、類似の所望のインビボ組織分布プロファイルを有する親mAbが選択されなければならない。あるいは、二重特異的標的化戦略の機構に基づいて、ある時には、組み合わせて得られた場合に同様に所望されるインビボ組織分布を有する親mAbを選択することが必要とされないことがある。例えば、DVD−Igの場合において、1つの結合成分は、特定の部位へとDVD−Igを標的化し、それによって第二の結合成分が同じ標的部位へと移動する。例えば、DVD−Igの一方の結合特異性は膵臓(島細胞)を標的とすることができ、他方の特異性は、GLP1を膵臓へと移動させてインシュリンを誘導することができる。
アイソタイプ、エフェクター機能および循環半減期を含むがこれらに限定されない所望の特性を有するDVD−Ig分子を生成するために、一実施形態において、治療有用性および所望の治療的エンドポイントに応じて適当なFcエフェクター機能を有する親mAbが選択される。5つの主要な重鎖のクラスまたはアイソタイプが存在し、これらのいくつかは複数のサブタイプを有し、これらは抗体分子のエフェクター機能を決定する。これらのエフェクター機能は抗体分子のヒンジ領域、CH2およびCH3ドメインにある。しかし、抗体分子の他の部分中の残基も同様にエフェクター機能に対する作用を有し得る。ヒンジ領域Fcエフェクター機能には、(i)抗体依存性細胞傷害、(ii)補体(Clq)結合、活性化および補体依存性細胞傷害(CDC)、(iii)食作用/抗原−抗体複合体の排除ならびに(iv)いくつかの場合におけるサイトカイン放出が含まれる。抗体分子のこれらのFcエフェクター機能は、Fc領域と1組のクラス特異的細胞表面受容体との相互作用を通じて媒介される。IgG1アイソタイプの抗体は最も活性であるが、IgG2およびIgG4は、最小限のエフェクター機能を有するまたはエフェクター機能を有さない。IgG抗体のエフェクター機能は、構造的に相同な細胞Fc受容体のタイプ(およびサブタイプ)(FcgR1、FcgRIIおよびFcgRIII)との相互作用を通じて媒介される。IgG1のこれらのエフェクター機能は、(FcgRおよびClq結合に必要とされる)下方のヒンジ領域(例えば、L234A、L235A)中の特定のアミノ酸残基を変異させることによって除去することが可能である。Fc領域、特にCH2−CH3ドメイン中のアミノ酸残基も、抗体分子の循環半減期を決定する。このFc機能は、Fc領域と(酸性リソソームから一般循環へと戻る抗体分子の再循環に関与する)新生児Fc受容体(FcRn)の結合を通じて媒介される。別の実施形態において、Fc断片の活性は、(例えば、免疫グロブリンG(IgG)中のAsn297で認められる複合体二分岐グリカンの最後から2番目のガラクトースに2,6−結合を有する)Fc部分のN結合グリカンのシアリル化によって大いに増強され得る(Anthony,RM(2008)Science 320:373−376)。
a)所望のエンドポイントが可溶性サイトカインの機能的中和である場合、不活性アイソタイプが使用され得る;
b)所望の結果が病的なタンパク質の排除である場合、活性アイソタイプが使用され得る;
c)所望の結果がタンパク質凝集物の排除である場合、活性アイソタイプが使用され得る;
d)所望の結果が表面受容体をアンタゴナイズすることである場合、不活性アイソタイプが使用される(Tysabri、IgG4;OKT3、変異IgGl);
e)所望の結果が標的細胞を除去することである場合、活性アイソタイプが使用される(Herceptin,IgG1(および増強されたエフェクター機能を有する);および
f)所望の結果が、CNSに入ることなく循環からタンパク質を排除することである場合、IgMアイソタイプが使用され得る(例えば、循環中のAbペプチド種の排除)。
親mAbのFcエフェクター機能は、本分野において周知である様々なインビトロ方法によって決定することが可能である。
IgG1−アロタイプ:G1mz
IgG1変異体−A234、A235
IgG2−アロタイプ:G2m(n−)
κ−Km3
λ
所望の薬物動態プロファイルを有するDVD−Ig分子を生成するために、一実施形態において、同様に所望の薬物動態プロファイルを有する親mAbが選択される。1つの考慮事項は、モノクローナル抗体に対する免疫原性応答(すなわち、HAHA、ヒト抗ヒト抗体応答;HACA、ヒト抗キメラ抗体応答)がこれらの治療剤の薬物動態をさらに複雑にしていることである。一実施形態において、最小限の免疫原性を有するまたは免疫原性を有さないモノクローナル抗体がDVD−Ig分子の構築に使用され、この結果得られたDVD−Igも最小限の免疫原性を有するまたは免疫原性を有さない。mAbのPKを決定するいくつかの因子には、mAbの固有の特性(VHアミノ酸配列);免疫原性;FcRn結合およびFc機能が含まれるがこれらに限定されない。
同一の染色パターンは、潜在的なヒト毒性をtox種において評価することが可能であることを示唆している。tox種は、非関連毒性が研究される動物である。
所望の特異性および選択性を有するDVD−Ig分子を生成するために、同様に所望の特異性および選択性プロファイルを有する親mAbを生成および選択する必要がある。
一実施形態において、適当なtox種、例えばカニクイザルに対する十分な交差反応性を有する個々の抗体が選択される。親抗体は、オルソロガス種標的(すなわち、カニクイザル)に結合し、適当な応答(調節、中和、活性化)を惹起することが必要である。一実施形態において、オルソロガス種標的に対する交差反応性(親和性/効力)は、ヒト標的の10倍以内であるべきである。実際に、親抗体は、マウス、ラット、イヌ、サル(および他の非ヒト霊長類)ならびに疾患モデル種(すなわち、喘息モデルのヒツジ)を含む複数の種について評価される。親モノクローナル抗体のtox種に対する許容可能な交差反応性は、同じ種におけるDVD−Ig−Igの将来の毒性学的研究を可能にする。この理由で、2つの親モノクローナル抗体は、通常のtox種について許容可能な交差反応性を有するべきであり、それによって同じ種におけるDVD−Igの毒性学的研究が可能になる。
M抗体、GenentechおよびNovartisによって開発されたXolair(登録商標)(オマリズマブ)ヒト化抗IgE抗体ならびにMLN01、Xomaによって開発されている抗β2インテグリン抗体が含まれるが、これらに限定されるものではない。別の実施形態において、治療薬には、KRN330(Kirin);huA33抗体(A33、Ludwig Institute for Cancer Research);CNTO 95(αVインテグリン、Centocor);MEDI−522(αVβ3インテグリン、Medimmune);ボロシキシマブ(αVβ1インテグリン、Biogen/PDL);ヒトmAb216(B細胞グリコシル化エピトープ、NCI);BiTE MT103(二重特異的CD19xCD3、Medimmune);4G7xH22(二重特異的B細胞xFcγR1、Medarex/Merck KGa);rM28(二重特異的CD28xMAPG、米国特許第EP1444268号);MDX447(EMD 82633)(二重特異的CD64xEGFR、Medarex);カツマキソマブ(リムバブ)(二重特異的EpCAMx 抗CD3、Trion/Fres);エルツマキソマブ(二重特異的HER2/CD3、Fresenius Biotech);オレゴボマブ(OvaRex)(CA−125、ViRexx);Rencarex(登録商標)(WX G250)(炭酸脱水酵素IX、Wilex);CNTO 888(CCL2、Centocor);TRC105(CD105(エンドグリン)、Tracon);BMS−663513(CD137アゴニスト,Brystol Myers Squibb);MDX−1342(CD19、Medarex);シプリズマブ(MEDI−507)(CD2、Medimmune);オファツムマブ(Humax−CD20)(CD20、Genmab);リツキシマブ(Rituxan)(CD20、Genentech);ベルツズマブ(hA20)(CD20、Immunomedics);エプラツズマブ(CD22、Amgen);ルミリキシマブ(IDEC 152)(CD23、Biogen);ムロモナブ−CD3(CD3、Ortho);HuM291(CD3fc受容体、PDL Biopharma);HeFi−1,CD30,NCI);MDX−060(CD30、Medarex);MDX−1401(CD30、Medarex);SGN−30(CD30、Seattle Genentics);SGN−33(リンツズマブ)(CD33、Seattle Genentics);ザノリムマブ(HuMax−CD4)(CD4、Genmab);HCD122(CD40、Novartis);SGN−40(CD40、Seattle Genentics);Campath1h(アレムツズマブ)(CD52、Genzyme);MDX−1411(CD70、Medarex);hLL1(EPB−1)(CD74.38、Immunomedics);ガリキシマブ(IDEC−144)(CD80、Biogen);MT293(TRC093/D93)(切断されたコラーゲン、Tracon);HuLuc63(CS1、PDL Pharma);イピリムマブ(MDX−010)(CTLA4、Brystol Myers Squibb);トレメリミムマブ(チシリムマブ、CP−675,2)(CTLA4、Pfizer);HGS−ETR1(マパツムマブ)(DR4 TRAIL−R1アゴニスト、Human Genome Science /Glaxo Smith Kline);AMG−655(DR5、Amgen);アポマブ(DR5、Genentech);CS−1008(DR5、Daiichi Sankyo);HGS−ETR2(レクサツムマブ)(DR5 TRAIL−R2アゴニスト、HGS);セツキシマブ(Erbitux)(EGFR、Imclone);IMC−11F8(EGFR、Imclone);ニモツズマブ(EGFR、YM Bio);パニツムマブ(Vectabix)(EGFR、Amgen);ザルツムマブ(HuMaxEGFr)(EGFR、Genmab);CDX−110(EGFRvIII、AVANT Immunotherapeutics);アデカツムマブ(MT201)(Epcam、Merck);エドレコロマブ(Panorex、17−1A)(Epcam、Glaxo/Centocor);MORAb−003(葉酸受容体a、Morphotech);KW−2871(ガングリオシドGD3、Kyowa);MORAb−009(GP−9、Morphotech);CDX−1307(MDX−1307)(hCGb、Celldex);トラスツズマブ(Herceptin)(HER2、Celldex);ペルツズマブ(rhuMAb 2C4)(HER2(DI)、Genentech);アポリズマブ(HLA−DRβ鎖、PDL Pharma);AMG−479(IGF−1R、Amgen);抗IGF−1R R1507(IGF1−R、Roche);CP 751871(IGF1−R、Pfizer);IMC−A12(IGF1−R、Imclone);BIIB022(IGF−1R、Biogen);MiK−β−1(IL−2Rb(CD122)、Hoffman LaRoche);CNTO 328(IL6、Centocor);抗KIR(1−7F9)(キラー細胞Ig様受容体(KIR)、Novo);Hu3S193(Lewis(y)、Wyeth,Ludwig Institute of Cancer Research);hCBE−11(LTβR、Biogen);HuHMFG1(MUC1、Antisoma/NCI);RAV12(N結合炭水化物エピトープ、Raven);CAL(副甲状腺ホルモン関連タンパク質(PTH−rP)、University of California);CT−011(PD1、CureTech);MDX−1106(ono−4538)(PD1、Medarex/Ono);MAb CT−011(PD1、Curetech);IMC−3G3(PDGFRa、Imclone);バビツキシマブ(ホスファチジルセリン、Peregrine);huJ591(PSMA、Cornell Research Foundation);muJ591(PSMA,Cornell Research Foundation);GC1008(TGFb(汎性)阻害剤(IgG4)、Genzyme);インフリキシマブ(Remicade)(TNFa、Centocor);A27.15(トランスフェリン受容体、Salk Institute,INSERN WO 2005/111082);E2.3(トランスフェリン受容体、Salk Institute);ベバシズマブ(Avastin)(VEGF、Genentech);HuMV833(VEGF、Tsukuba Research Lab−WO/2000/034337,University of Texas);IMC−18F1(VEGFR1、Imclone);IMC−1121(VEGFR2、Imclone)が含まれる。
二重可変ドメイン免疫グロブリン(DVD−Ig(商標))分子は、2つの異なる親モノクローナル抗体由来の2つの異なる軽鎖可変ドメイン(VL)が、組み換えDNA技術によって、直接または短いリンカーを介して直列に連結され、その後に軽鎖定常ドメインが続くように設計される。同様に、重鎖は、直列に連結された2つの異なる重鎖可変ドメイン(VH)の後に、定常ドメインCH1およびFc領域(図1A)を含む。
本発明の結合タンパク質は、本分野で公知の多数のいずれかによって作製され得る。例えば、宿主細胞からの発現において、DVD重鎖およびDVD軽鎖をコードする発現ベクターは、標準的な技術によって、宿主細胞中に形質移入される。「形質移入」という用語の様々な形態は、原核または真核宿主細胞中への外来DNAの導入のために一般に使用される多様な技術、例えば、電気穿孔、リン酸カルシウム沈殿、DEAE−デキストラン形質移入などを包含するものとする。原核または真核宿主細胞のいずれの中でも、本発明のDVDタンパク質を発現することは可能であるが、真核細胞(特に、哺乳動物細胞)は、原核細胞に比べて、適切に折り畳まれ、免疫学的に活性なDVDタンパク質を集合および分泌する傾向がより大きいので、DVDタンパク質は真核細胞、例えば哺乳動物宿主細胞中で発現される。
一実施形態は、標識された結合タンパク質を提供し、ここで、本発明の結合タンパク質は、別の機能的分子(例えば、別のペプチドまたはタンパク質)へ誘導体化され、または連結される。例えば、本発明の標識された結合タンパク質は、別の抗体(例えば、二特異的抗体またはダイアボティ)、検出可能作用物質、細胞毒性剤、薬剤および/または別の分子(ストレプトアビジンコア領域またはポリヒスチジンタグなど)との、結合タンパク質の会合を媒介可能なタンパク質もしくはペプチドなどの1つ以上の他の分子実体へ、(化学的カップリング、遺伝的融合、非共有会合またはその他によって)本発明の結合タンパク質を機能的に連結することによって誘導することが可能である。
本発明の結合タンパク質は2つまたはそれ以上の抗原に結合することができるので、本発明の結合タンパク質は、酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)、ラジオイムノアッセイ(RIA)または組織免疫組織化学など慣用のイムノアッセイを用いて、(例えば、血清または血漿などの生物学的試料中で)抗原を検出するために使用することが可能である。DVD−Igは、結合したまたは結合していない抗体の検出を促進するために、検出可能な物質で直接または間接的に標識される。適切な検出可能な物質には、様々な酵素、補欠分子族、蛍光物質、発光物質および放射性物質が含まれる。適切な酵素の例には、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼまたはアセチルコリンエステラーゼが含まれる。適切な補欠分子族複合体の例には、ストレプトアビジン/ビオチンおよびアビジン/ビオチンが含まれる。適切な蛍光物質の例には、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアナート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロリドまたはフィコエリトリンが含まれる。発光物質の例には、ルミノールが含まれる;および適切な放射性材料の例には、3H、14C、 35S、90Y、99Tc、111In、125I、131I、177Lu、166Hoまたは153Smが含まれる。
治療の標的(http://xin.cz3.nus.edu.sg/group/cjttd/ttd.asp);
サイトカインおよびサイトカイン受容体(http://www.cytokinewebfacts.com/、http://www.copewithcytokines.de/cope.cgiおよび
http://cmbi.bjmu.edu.cn/cmbidata/cgf/CGF_Database/cytokine.medic.kumamoto−u.ac.jp/CFC/indexR.html);
ケモカイン(http://cytokine.medic.kumamoto−u.ac.jp/CFC/CK/Chemokine.html);
ケモカイン受容体およびGPCR(http://csp.medic.kumamoto−u.ac.jp/CSP/Receptor.html、http://www.gpcr.org/7tm/);
嗅覚受容体(http://senselab.med.yale.edu/senselab/ORDB/default.asp);
受容体(http://www.iuphar−db.org/iuphar−rd/list/index.htm);
癌標的(http://cged.hgc.jp/cgi−bin/input.cgi);
潜在的な抗体標的として分泌されるタンパク質(http://spd.cbi.pku.edu.cn/);
タンパク質キナーゼ(http://spd.cbi.pku.edu.cn/)ならびに
ヒトCDマーカー(http://content.labvelocity.com/tools/6/1226/CD_table_final_locked.pdf)および(Zola H,2005 CD molecules 2005:human cell differentiation molecules Blood,106:3123−6)。
本発明のDVD−Ig分子は、様々な疾病を治療するための治療分子としても有用である。このようなDVD分子は、特定の疾病に関与する1つ以上の標的に結合し得る。様々な疾病におけるこのような標的の例が、以下に記載されている。
C5、CCL1(I−309)、CCL11(エオタキシン)、CCL13(mcp−4)、CCL15(MIP−1d)、CCL16(HCC−4)、CCL17(TARC)、CCL18(PARC)、CCL19、CCL2(mcp−1)、CCL20(MIP−3a)、CCL21(MIP−2)、CCL23(MPIF−1)、CCL24(MPIF−2/エオタキシン−2)、CCL25(TECK)、CCL26、CCL3(MIP−1a)、CCL4(MIP−1b)、CCL5(RANTES)、CCL7(mcp−3)、CCL8(mcp−2)、CXCL1、CXCL10(IP−10)、CXCLIl(I−TAC/IP−9)、CXCL12(SDF1)、CXCL13、CXCL14、CXCL2、CXCL3、CXCL5(ENA−78/LIX)、CXCL6(GCP−2)、CXCL9、IL13、IL8、CCL13(mcp−4)、CCR1、CCR2、CCR3、CCR4、CCR5、CCR6、CCR7、CCR8、CCR9、CX3CR1、IL8RA、XCR1(CCXCR1)、IFNA2、IL10、IL13、IL17C、IL1A、IL1B、IL1F10、IL1F5、IL1F6、IL1F7、IL1F8、IL1F9、IL22、IL5、IL8、IL9、LTA、LTB、MIF、SCYE1(内皮単球活性化サイトカイン)、SPP1、TNF、TNFSF5、IFNA2、IL10RA、IL10RB、IL13、IL13RA1、IL5RA、IL9、IL9R、ABCF1、BCL6、C3、C4A、CEBPB、CRP、ICEBERG、IL1R1、IL1RN、IL8RB、LTB4R、TOLLIP、FADD、IRAK1、IRAK2、MYD88、NCK2、TNFAIP3、TRADD、TRAF1、TRAF2、TRAF3、TRAF4、TRAF5、TRAF6、ACVR1、ACVR1B、ACVR2、ACVR2B、ACVRL1、CD28、CD3E、CD3G、CD3Z、CD69、CD80、CD86、CNR1、CTLA4、CYSLTR1、FCER1A、FCER2、FCGR3A、GPR44、HAVCR2、OPRD1、P2RX7、TLR2、TLR3、TLR4、TLR5、TLR6、TLR7、TLR8、TLR9、TLR10、BLR1、CCL1、CCL2、CCL3、CCL4、CCL5、CCL7、CCL8、CCL11、CCL13、CCL15、CCL16、CCL17、CCL18、CCL19、CCL20、CCL21、CCL22、CCL23、CCL24、CCL25、CCR1、CCR2、CCR3、CCR4、CCR5、CCR6、CCR7、CCR8、CCR9、CX3CL1、CX3CR1、CXCL1、CXCL2、CXCL3、CXCL5、CXCL6、CXCL10、CXCL11、CXCL12、CXCL13、CXCR4、GPR2、SCYE1、SDF2、XCL1、XCL2、XCR1、AMH、AMHR2、BMPRlA、BMPR1B、BMPR2、C19orf10(IL27w)、CER1、CSF1、CSF2、CSF3、DKFZp451J0118、FGF2、GFI1、IFNA1、IFNB1、IFNG、IGF1、IL1A、IL1B、IL1R1、IL1R2、IL2、IL2RA、IL2RB、IL2RG、IL3、IL4、IL4R、IL5、IL5RA、IL6、IL6R、IL6ST、IL7、IL8、IL8RA、IL8RB、IL9、IL9R、IL10、IL10RA、IL10RB、IL11、IL11RA、IL12A、IL12B、IL12RB1、IL12RB2、IL13、EL13RA1、IL13RA2、IL15、IL15RA、IL16、IL17、IL17R、IL18、IL18R1、IL19、IL20、KITLG、LEP、LTA、LTB、LTB4R、LTB4R2、LTBR、MIF、NPPB、PDGFB、TBX21、TDGF1、TGFA、TGFB1、TGFB1I1、TGFB2、TGFB3、TGFBI、TGFBR1、TGFBR2、TGFBR3、TH1L、TNF、TNFRSF1A、TNFRSF1B、TNFRSF7、TNFRSF8、TNFRSF9、TNFRSF11A、TNFRSF21、TNFSF4、TNFSF5、TNFSF6、TNFSF11、VEGF、ZFPM2、RNF110(ZNF144)、FGFファミリー、PLGF、DLL4およびNPR−1など、多くのタンパク質が、一般的な自己免疫および炎症性応答に関与していると推定されている。一態様において、本明細書に列記されている標的の1つ以上に結合することが可能なDVD−Igが提供される。
アレルギー性喘息は、好酸球増加症、杯細胞異形成、上皮細胞の変化、気道過敏症(AHR)ならびにTh2およびTh1サイトカイン発現ならびに上昇した血清IgEレベルの存在によって特徴付けられる。気道炎症が、喘息の発病の基礎を成す中心的な因子であることは、現在では広く受け入れられており、T細胞、B細胞、好酸球、肥満細胞およびマクロファージなどの炎症性細胞と、サイトカインおよびケモカインなどの分泌されるこれらの媒介物質の複雑な相互作用が関与している。コルチコステロイドは、今日、喘息に対する最も重要な抗炎症性治療であるが、それらの作用機序は非特異的であり、特に、若い患者集団では、安全性についての懸念が存在する。したがって、より特異的で、標的化された治療の開発が必要とされる。マウス中のIL−13が、好酸球性炎症とは独立に、AHR、粘膜の過剰分泌および気道繊維症など、喘息の特徴の多くを模倣するという、証拠が増加している。(Finotto et al.,International Immunology(2005),17(8),993−1007;Padilla et al.,Journal of Immunology(2005),174(12),8097−8105)。
全身性疾患である関節リウマチ(RA)は、関節の滑液中の慢性的炎症反応によって特徴付けられ、軟骨の変性と隣接する関節骨を伴う。TNF、ケモカインおよび成長因子など、多くの炎症促進性サイトカインが、罹患した関節中に発現されている。抗TNF抗体またはsTNFR融合タンパク質の、RAのマウスモデルへの全身投与は、抗炎症性および関節保護的であることが示された。RA患者中のTNFの活性が、静脈内に投与されたインフリキシマブ(キメラ抗TNFmAB)で遮断された臨床的調査(Harriman G,Harper LK,Schaible TF.1999 Summary of clinical trials in rheumatoid arthritis using infliximab,an anti−TNFalpha treatment.Ann Rheum Dis 58 Suppl 1:161−4)は、TNFがIL−6、IL−8、MCP−1およびVEGF産生、免疫および炎症性細胞の関節中への動員、血管新生ならびにマトリックスメタロプロテイナーゼ−1および−3の血液レベルの低下を制御するという証拠を提供した。関節リウマチにおける炎症性経路をより深く理解することによって、関節リウマチに関与する他の治療標的の同定に結びついた。過去、インターロイキン−6アンタゴニスト(Chugai、Rocheによって開発されたIL−6受容体抗体MRA、Nishimoto,Norihiro et al.,Arthritis&Rheumatism(2004),50(6),1761−1769参照)、CTLA4Ig(アダタセプト、Genovese Mc et al 2005 Abatacept for rheumatoid arthritis refractory to tumor necrosis factor alpha inhibition.N Engl J Med.353:1114−23.)、および抗B細胞療法(リツキシマブ、Okamoto H,Kamatani N.2004 Rituximab for rheumatoid arthritis.N Engl J Med.351:1909)などの有望な治療が、無作為化された対照臨床試験においてすでに検査されてきた。インターロイキン−15(治療用抗体HuMax−IL_15、AMG714、Baslund,Bo et al.,Arthritis&Rheumatism(2005),52(9),2686−2692)、インターロイキン−17およびインターロイキン−18など、他のサイトカインが同定され、動物モデルにおいて有益であることが示されており、これらの作用物質の臨床試験が現在進行中である。抗TNFおよび別の媒介物質を組み合わせた二重特異的抗体療法は、臨床的効力および/または患者の対象範囲を増大させる上で大きな可能性を秘めている。例えば、TNFとPGE2(いずれも、RAの病態生理学に関与している。)の両方を遮断することは、炎症および血管新生を根絶することができる可能性を秘めている。TNFおよびPGE2;TNFαおよびIL−18;TNFαおよびIL−12;TNFαおよびIL−23;TNFαおよびIL−1β;TNFαおよびMIF;TNFαおよびIL−17;TNFαおよびIL−17A;TNFαおよびIL−17F;TNFαおよびIL−17C;TNFαおよびIL−15;TNFαおよびVEGF;TNFαおよびOX40;TNFαおよびOX40L;TNFαおよびBAFF;TNFαおよびCD20;TNFαおよびHMGB1;TNFαおよびヒスタミン;TNFαおよびRAGE;TNFαおよびCXCL12;TNFαおよびCTLA4;TNFαおよびCad−11;TNFαおよびWnt5A;TNFαおよびADMATS−4;TNFαおよびADMATS−5;TNFαおよびADMATS−4/5;TNFαおよびMMP13;TNFαおよびMMP1;TNFαおよびMMP3;TNFαおよびMMP4;TNFαおよびRANKL;TNFαおよびSOST;TNFαおよびDKK1;TNFαおよびLRP5/6;TNFαおよびKremen;TNFαおよびSFRPS;TNFαおよびIL−6;TNFαおよびIL−32;TNFαおよびIL−33;TNFαおよびIL−6R;TNFαおよびカテプシンK;TNFαおよびブラジキニン;TNFαおよびNGF;PGE2およびCTLA4;PGE2およびIL−1β;PGE2およびIL−12;PGE2およびIL−23;PGE2およびIL−15;PGE2およびIL−17;PGE2およびIL−17A;PGE2およびIL−17F;PGE2およびIL−17C;PGE2およびIL−18;PGE2およびIL−6;PGE2およびIL−6R;PGE2およびgp130;PGE2およびBAFF;S1PおよびPGE2;EGFR(配列1)およびPGE2、EGFR(配列2)およびPGE2、およびIGFRおよびPGE2、PGE2およびAβ(配列1、2または3)、PGE2およびADMATS−4;PGE2およびADMATS−5;PGE2およびADMATS−4/5;PGE2およびMMP−1;PGE2およびMMP−3;PGE2およびMMP−4;PGE2およびMMP−13;PGE2およびカテプシンK;PGE2およびブラジキニン;PGE2およびRANKL;PGE2およびDKK1;PGE2およびSOST;PGE2およびNGF;PGE2およびRAGE;PGE2およびS1P;PGE2およびIL−15;PGE2およびVEGF;PGE2およびカドヘリンを含む(但し、これらに限定されない。)、RAに関与している標的の他の対を、特異的DVDIgで遮断することも想定される。これらの標的対の定型的な安全性評価に加えて、免疫抑制の程度に対する特異的検査が保証され、最高の標的対を選択する上で役立ち得る(Luster et al.,Toxicology(1994),92(1−3),229−43;Descotes,et al.,Developments in biological standardization(1992),77 99−102;Hart et al.,Journal of Allergy and Clinical Immunology(2001),108(2),250−257参照)。DVDIg分子が関節リウマチの治療に対して有用であるかどうかは、コラーゲンによって誘導された関節炎マウスモデルなど、前臨床動物RAモデルを用いて評価することが可能である。他の有用なモデルも本分野において周知である(Brand DD.,Comp Med.(2005)55(2):114−22参照)。ヒトおよびマウスオルソログに対する親抗体の交差反応性(例えば、ヒトおよびマウスTNF、ヒトおよびマウスIL−15などに対する反応性)を基礎として、「適合代理抗体」由来DVD−Ig分子を用いてマウスCIAモデルにおける妥当性確認研究を行うことが可能である;簡潔に述べると、2つ(またはそれ以上)のマウス標的特異的抗体を基礎とするDVD−Igは、ヒトDVD−Ig構築に使用される親ヒトまたはヒト化抗体の特徴に可能な限り適合し得る(類似した親和性、類似した中和効力、類似した半減期など)。
SLEの免疫病原性の特徴は、ポリクローナルB細胞活性化であり、これは、高グロブリン血症、自己抗体産生および免疫複合体形成をもたらす。基本的な異常は、全般的なT細胞の調節不全のために、T細胞が禁じられたB細胞クローンを抑制できないことであるように見受けられる。さらに、BおよびT細胞の相互作用は、第二のシグナルを開始する、IL−10ならびにCD40とCD40LおよびB7およびCD28とCTLA−4などの同時刺激分子などのいくつかのサイトカインによって促進される。これらの相互作用は、免疫複合体およびアポトーシス材料の損傷された食細胞の排除とともに、生じた組織傷害によって免疫応答を永続化させる。以下の標的がSLEに関与し得、治療的介入のためのDVD−Igアプローチのために使用できる可能性を秘めている。B細胞標的化療法:CD−20、CD−22、CD−19、CD28、CD4、CD80、HLA−DRA、IL10、IL2、IL4、TNFRSF5、TNFRSF6、TNFSF5、TNFSF6、BLR1、HDAC4、HDAC5、HDAC7A、HDAC9、ICOSL、IGBP1、MS4A1、RGS1、SLA2、CD81、IFNB1、IL10、TNFRSF5、TNFRSF7、TNFSF5、AICDA、BLNK、GALNAC4S−6ST、HDAC4、HDAC5、HDAC7A、HDAC9、IL10、IL11、IL4、INHA、INHBA、KLF6、TNFRSF7、CD28、CD38、CD69、CD80、CD83、CD86、DPP4、FCER2、IL2RA、TNFRSF8、TNFSF7、CD24、CD37、CD40、CD72、CD74、CD79A、CD79B、CR2、IL1R2、ITGA2、ITGA3、MS4A1、ST6GAL1、CD1C、CHST10、HLA−A、HLA−DRAおよびNT5E;同時刺激シグナル:CTLA4またはB7.1/B7.2;B細胞生存の阻害:BlyS、BAFF;補体不活化:C5;サイトカイン調節。中心的な原理は、いずれかの組織中の総合的な生物応答は、炎症促進性サイトカインまたは抗炎症性サイトカインの局所レベル間のバランスの結果であるということである(Sfikakis PP et al 2005 Curr Opin Rheumatol 17:550−7参照)。SLEは、血清IL−4、IL−6、IL−10の文献に報告された上昇を伴う、Th2によって誘導される疾病であると考えられる。IL−4、IL−6、IL−10、INF−α、PGE2およびTNF−αからなる群から選択される1つ以上の標的に結合することが可能なDVDIgも想定される。本明細書で論述されている標的の組合せは、多数の狼瘡前臨床モデル中で検査することが可能なSLEに対して治療的な効力を増強する(Peng SL(2004)Methods Mol Med.;102:227−72参照)。ヒトおよびマウスオルソログに対する親抗体の交差反応性(例えば、ヒトおよびマウスCD20、ヒトおよびマウスインターフェロンαなどに対する反応性)を基礎として、「適合代理抗体」由来DVD−Ig分子を用いてマウスループスモデルにおける妥当性確認研究を行うことが可能である;簡潔に述べると、2つ(またはそれ以上)のマウス標的特異的抗体を基礎とするDVD−Igは、ヒトDVD−Ig構築に使用される親ヒトまたはヒト化抗体の特徴に可能な限り適合し得る(類似した親和性、類似した中和効力、類似した半減期など)。
多発性硬化症(MS)は、主に病因が不明である複雑なヒト自己免疫型疾病である。神経系を通じたミエリン塩基性タンパク質(MBP)の免疫学的破壊が、多発性硬化症の主要な病因である。MSは、CD4+およびCD8+T細胞による浸潤を伴う複雑な病変の疾病であり、中枢神経系内の応答の疾病である。サイトカイン、反応性窒素種および同時刺激分子の中枢神経系中での発現はすべて、MSにおいて記載されている。主に検討すべきであるのは、自己免疫の発達に寄与する免疫学的機序である。特に、Th1およびTh2細胞などの他のT細胞のバランス/調節を補助する、抗原発現、サイトカインおよび白血病相互作用ならびに調節性T細胞は、治療標的の同定のための重要な領域である。
敗血症の病態生理は、グラム陰性生物(リポ多糖[LPS]、リピドA、エンドトキシン)およびグラム陽性生物(リポテイコ酸、ペプチドグリカン)の両方の外膜成分によって開始される。これらの外膜成分は、単球の表面上のCD14受容体に結合することが可能である。最近記載されたトール様受容体によって、シグナルは、その後、細胞へと伝達され、炎症促進性サイトカインである腫瘍壊死因子α(TNF−α)およびインターロイキン−1(IL−1)の最終的な産生をもたらす。圧倒的な炎症性応答および免疫応答は、敗血症性ショックの本質的な特徴であり、敗血症によって誘導される組織損傷、多臓器不全および死亡の病因において中心的な役割を果たす。サイトカイン、特に、腫瘍壊死因子(TNF)およびインターロイキン(IL−1)は、敗血症性ショックの極めて重要な媒介物質であることが示されている。これらのサイトカインは、組織に対して直接的な毒性効果を有しており、ホスホリパーゼA2も活性化させる。これらの効果および他の効果は、血小板活性化因子、酸化窒素合成酵素活性の促進、好中球による組織浸潤の促進および好中球活性の促進の増加した濃度をもたらす。
7.1神経変性疾患
慢性神経変性疾患は、通常、神経細胞機能の進行性の喪失(神経細胞死、脱ミエリン化)、運動性の喪失および記憶の喪失によって特徴付けられる年齢依存性疾患である。慢性神経変性疾患(例えば、アルツハイマー病)の基礎を成す機序として明らかになりつつある知見は、複雑な病因を示しており、それらの発達および進行に、様々な要因、例えば、年齢、血糖状態、アミロイド産生および多量体化、RAGE(AGEに対する受容体)に結合する後天的糖化終末産物(AGE)の蓄積、増加した脳の酸化的ストレス、減少した脳の血流、炎症性サイトカインおよびケモカインの放出を含む神経炎症、神経細胞の機能不全およびミクログリアの活性化が寄与していることが認められている。したがって、これらの慢性神経変性疾患は、複数の細胞種および媒介物質の間で複雑な相互作用を示す。このような疾病に対する治療戦略は限られており、非特異的な抗炎症剤(例えば、コルチコステロイド、COX阻害剤)または神経細胞の喪失および/またはシナプス機能を抑制するための作用物質で炎症プロセスを遮断することが大部分を占める。これらの治療は、疾病の進行を停止させることができない。最近の研究は、可溶性A−bペプチド(A−bオリゴマー形態)に対する抗体などのより標的化された療法が、疾病の進行を停止させるのに役立つことができるのみならず、記憶を維持するのにも役立ち得ることを示唆している。これらの予備的な観察は、2以上の疾病媒介物質を標的とする特異的な療法(例えば、A−bおよび炎症促進性サイトカイン(TNFなど))が、単一の疾病機序を標的化する場合に観察されたものより、慢性神経変性疾患に対して、ずっと優れた治療的効果を提供し得ることを示唆している(例えば、可溶性A−バロン)(CE.Shepherd,et al,Neurobiol Aging.2005 Oct 24;Nelson RB.,Curr Pharm Des.2005;11:3335;William L.Klein.;Neurochem Int.2002;41:345;Michelle C Janelsins,et al.,J Neuroinflammation.2005;2:23;Soloman B.,Curr Alzheimer Res.2004;1:149;Igor Klyubin,et al.,Nat Med.2005;11:556−61;Arancio O,et al.,EMBO Journal(2004)1−10;Bornemann KD,et al.,Am J Pathol.2001;158:63;Deane R,et al.,Nat Med.2003;9:907−13;およびEliezer Masliah,et al.,Neuron.2005;46:857参照)。
病的機序の知見の増大にかかわらず、脊髄損傷(SCI)は、なお、多大な損害を与える症状であり、高い医学的な要求を特徴とする医学的な適応症である。多くの脊髄損傷は、挫傷または圧迫傷害であり、通常、一次損傷に続いて、最初の損傷を悪化させ、病変部位の著しい拡大(特には、10倍超)をもたらす二次的な損傷機序(炎症媒介物質、例えば、サイトカインおよびケモカイン)が起こる。SCIにおけるこれらの原発および続発性の機序は、他の手段、例えば発作によって引き起こされた脳損傷における機序と極めて類似している。満足する治療は存在せず、メチルプレドニゾロン(MP)の高用量ボーラス注射は、損傷から8時間後という狭い時間枠内で使用される唯一の療法である。しかしながら、この治療は、顕著な機能的回復が全くなしに、続発性損傷を予防することのみを目的としている。明瞭な効果の欠如ならびにその後の感染症を伴う免疫抑制および重い組織病理学的な筋肉の変化などの重い副作用に対して大きな批判が為されている。内在性の再生能を刺激する他の薬物、生物学または小分子は認可されていないが、有望な治療原理および薬物候補が、近年、SCIの動物モデルにおいて有効性を示している。多くの場合、ヒトSCIにおける機能的回復の欠如は、病変部位における、瘢痕組織中、ミエリン中および損傷を伴う細胞上における神経突起の増殖を阻害する因子によって引き起こされる。このような因子は、ミエリン随伴タンパク質NogoA、OMgpおよびMAG、RGMA、瘢痕随伴CSPG(コンドロイチン硫酸プロテオグリカン)および反応性星状膠細胞に対する阻害因子(一部のセマホリンおよびエフリン)である。しかしながら、病変部位では、増殖阻害分子が見出されるのみならず、ニューロトロフィン、ラミニンL1およびその他のような神経突起成長刺激因子も見出される。阻害的な影響の低下が、バランスを、増殖阻害から増殖促進へとシフトさせ得るので、神経突起成長阻害分子および神経突起成長促進分子のこの協調は、NogoAまたはRGMAのような単一の因子を遮断することが、げっ歯類SCIモデルにおいて著しい機能回復をもたらしたことを説明し得る。しかしながら、単一の神経突起成長阻害分子を遮断することによって観察された回復は完全ではなかった。より速く、より顕著な回復を達成するためには、2つの神経突起成長阻害分子(例えば、NogoおよびRGMA)を遮断するまたは神経突起成長阻害分子を遮断し、神経突起成長増強分子の機能を増強するか(例えば、Nogoおよびニューロトロフィン)、または神経突起成長阻害分子(例えば、Nogo)および炎症促進性分子(例えば、TNF)を遮断することが、望ましい場合があり得る(McGee AW,et al.,Trends Neurosci.2003;26:193;Marco Domeniconi,et al.,J Neurol Sci.2005;233:43;Milan Makwanal,et al.,FEBS J.2005;272:2628;Barry J.Dickson,Science.2002;298:1959;Felicia Yu Hsuan Teng,et al.,J Neurosci Res.2005;79:273;Tara Karnezis,et al.,Nature Neuroscience 2004;7,736;Gang Xu,et al.,J.Neurochem.2004;91;1018参照)。
モノクローナル抗体療法が、癌に対する重要な治療法として登場している(von Mehren,M.,et al.(2003)Annu.Rev.Med.54:343−69)。抗体は、アポトーシス、再誘導された細胞毒性、リガンド−受容体相互作用の妨害を誘導し、または新生物表現型にとって重大なタンパク質の発現を抑制することによって、抗腫瘍効果を発揮し得る。さらに、抗体は、腫瘍微小環境の成分を標的とすることが可能であり、腫瘍に付随する脈管構造の形成など不可欠な構造を擾乱する。抗体は、そのリガンドが増殖因子である受容体(上皮増殖因子受容体など)を標的とすることも可能である。したがって、抗体は、細胞増殖を刺激する天然のリガンドが標的とされる腫瘍細胞へ結合することを阻害する。あるいは、抗体は、抗イディオタイプネットワーク、補体媒介性細胞傷害または抗体依存性細胞傷害(ADCC)を誘導し得る。2つの別個の腫瘍媒介物質を標的とする二重特異的抗体の使用は、単一特異的療法に比べて、さらなる有利さを与えるものと思われる。
以上)は、上記リストから選択されるものを含むが、それらに限定されない。
腫瘍壊死因子およびプロスタグランジンE2は、様々な感染性疾患において観察される生物学的作用を媒介することに関与している。例えば、TNFαは、マラリアにおいて脳炎症および毛細血管血栓症および梗塞を媒介することに関与している(例えば、Tracey and Cerami、上記を参照)。TNFαは、髄膜炎において脳炎症を媒介し、血液脳関門の破壊を誘導し、敗血症性ショック症候群を誘発し、静脈梗塞を活性化することにも関与している(例えば、Tracey and Cerami、上記を参照)。TNFαは、後天性免疫不全症候群(AIDS)において悪液質を誘導し、ウイルス増殖を刺激し、中枢神経系の損傷を媒介することにも関与している(例えば、Tracey and Cerami、上記を参照)。したがって、本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、細菌性髄膜炎(例えば、欧州特許出願公開EP 585 705を参照)、脳性マラリア、AIDSおよびAIDS関連症候群(ARC)(例えば、欧州特許出願公開EP 230 574を参照)、(ギラン・バレー症候群、伝染性単核球症、他のウイルス性リンパ節症およびヘルペスウイルス感染などの)ウイルスによって誘導される特定の疾病ならびに移植に続発するサイトメガロウイルス感染(例えば、Fietze,E.,et al.(1994)Transplantation 58:675−680を参照)を含む感染性疾患の治療において使用することが可能である。本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、感染(インフルエンザなど)による発熱および筋肉痛ならびに感染に続発する(例えばAIDSまたはARCに続発する)悪液質を含む、感染性疾患に伴う症状を緩和するために使用することも可能である。
腫瘍壊死因子およびプロスタグランジンE2は、同種移植片拒絶および移植片対宿主病(GVHD)の重要な媒介物質として、T細胞受容体CD3複合体に対するラット抗体OKT3が腎移植片の拒絶を阻害するために使用された場合に観察されている有害反応を媒介することに関与している(例えば、Tracey and Cerami、上記;Eason,J.D.,et al.(1995)Transplantation 59:300−305;Suthanthiran,M.and Strom,T.B.(1994)New Engl.J.Med.331:365−375を参照)。従って、本発明の抗体および抗体部分は、同種移植片および異種移植片の拒絶を含む移植片拒絶を阻害するためおよびGVHDを阻害するために使用することが可能である。DVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は単独で使用され得るが、より好ましくは、同種移植片に対する免疫応答を阻害するまたはGVHDを阻害する1つ以上の他の薬剤と組み合わせて使用される。例えば、一実施形態において、本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、OKT3によって誘導される反応を阻害するために、OKT3と組み合わせて使用される。別の実施形態において、本発明の抗体または抗体部分は、細胞表面分子CD25(インターロイキン−2受容体α)、CD11a(LFA−1)、CD54(ICAM−1)、CD4、CD45、CD28/CTLA4、CD80(B7−1)および/またはCD86(B7−2)など、免疫応答の制御に関与する他の標的に向けた1つ以上の他の抗体と組み合わせて使用される。さらに別の実施形態において、本発明の抗体または抗体部分は、シクロスポリンAまたはFK506.11などの1つ以上の一般的な免疫抑制剤と組み合わせて使用される。
腫瘍壊死因子は、白血球−内皮活性化の刺激、肺細胞に対する細胞毒性の誘導および血管漏出症候群の誘導を含む、成人呼吸窮迫症候群の病態生理に関与している(例えば、Tracey and Cerami、上記を参照)。従って、本発明の抗体および抗体部分は、成人呼吸窮迫症候群(例えば、PCT公開WO91/04054を参照)、ショック肺、慢性肺炎症性疾患、肺サルコイドーシス、肺線維症および珪肺症を含む様々な肺疾患を治療するために使用することが可能である。DVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、全身にまたは肺表面に局所的に、例えばエアロゾルとして投与し得る。
腫瘍壊死因子およびプロスタグランジンは、炎症性腸疾患の病態生理に関与している(例えば、Tracy,K.J.,et al.(1986)Science 234:470−474;Sun,X−M.,et al.(1988)J.Clin.Invest.81:1328−1331;MacDonald,T.T.,et al.(1990)Clin.Exp.Immunol.81:301−305を参照)。キメラマウス抗hTNFα抗体は、クローン病の治療について臨床試験を受けている(van Dullemen,H.M.,et al.(1995)Gastroenterology 109:129−135)。抗TNFα抗体HUMIRAは、クローン病の治療について承認されている。本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、2つの症候群であるクローン病および潰瘍性大腸炎を含む突発性炎症性腸疾患などの腸疾患を治療するために使用することも可能である。
本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、心臓の虚血(例えば、欧州特許出願公開EP 453 898を参照)および心臓不全(心筋の衰弱)(例えば、PCT公開WO94/20139を参照)を含む様々な心疾患を治療するために使用することも可能である。
本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分は、TNFαおよび/またはPGE2活性が有害である様々な他の疾患を治療するために使用することも可能である。TNFαおよび/またはPGE2活性が病態生理に関与しており、従って本発明のDVD−Ig(商標)分子またはDVD−Ig(商標)部分を使用して治療することが可能である他の疾患および障害の例には、炎症性骨障害、骨成長疾患および骨再吸収疾患(例えば、Bertolini,D.R.,et al.(1986)Nature 319:516−518;Konig,A.,et al.(1988)J.Bone Miner.Res.3:621−627;Lerner,U.H.and Ohlin,A.(1993)J.Bone Miner.Res.8:147−155;およびShankar,G.and Stem,P.H.(1993)Bone 14:871−876を参照)、アルコール性肝炎(例えば、McClain,C.J.and Cohen,D.A.(1989)Hepatology 9:349−351;Felver,M.E.,et al.(1990)Alcohol.Clin.Exp.Res.14:255−259;およびHansen,J.,et al.(1994)Hepatology 20:461−474)およびウイルス性肝炎(Sheron,N.,et al.(1991)J.Hepatol.12:241−245;およびHussain,M.J.,et al.(1994)J.Clin.Pathol.47:1112−1115を参照)を含む肝炎、凝固障害(例えば、van der Poll,T.,et al.(1990)N.Engl.J.Med.322:1622−1627;およびvan der Poll,T.,et al.(1991)Prog.Clin.Biol.Res.367:55−60を参照)、火傷(例えば、Giroir,B.P.,et al.(1994)Am.J.Physiol.267:H118−124;およびLiu,X.S.,et al.(1994)Burns 20:40−44を参照)、再灌流障害(例えば、Scales,W.E.,et al.(1994)Am.J.Physiol.267:G1122−1127;Serrick,C.,et al.(1994)Transplantation 58:1158−1162;およびYao,Y.M.,et al.(1995)Resuscitation 29:157−168を参照)、ケロイド形成(例えば、McCauley,R.L.,et al.(1992)J.Clin.lmmunol.12:300−308を参照)、瘢痕組織形成および発熱、アレルギー性関節炎、溶血性貧血および血小板減少症などの血液疾患、(真性糖尿病、アジソン病、突発性副甲状腺機能低下症および慢性リンパ性甲状腺炎などの)内分泌疾患、(無月経、不妊、反復流産および子癇などの)生殖系疾患ならびに加齢性黄斑変性(AMD)などの眼疾患が含まれる。
本発明は、本発明の結合タンパク質および医薬として許容される担体を含む医薬組成物も提供する。本発明の結合タンパク質を含む医薬組成物は、疾患を診断し、検出し、もしくはモニタリングし、疾患または1つもしくはそれ以上のその症候を予防し、治療し、管理し、もしくは軽減する上で、および/または研究において使用されるが、これらに限定されない。特定の実施形態において、組成物は、1つ以上の本発明のタンパク質を含む。別の実施形態において、医薬組成物は、1つ以上の本発明の結合タンパク質、および疾患を治療するための、本発明の結合タンパク質以外の1つ以上の予防または治療剤を含む。一実施形態において、予防剤または治療剤は、疾患または1つもしくはそれ以上のその症候の予防、治療、管理または軽減に有用であることが知られており、または疾患または1つもしくはそれ以上のその症候の予防、治療、管理または軽減においてこれまで使用されており、もしくは現在使用されている。これらの実施形態に従えば、組成物は、担体、希釈剤または賦形剤をさらに含み得る。
本明細書における開示は、診断の適用例も提供する。これは、以下でさらに明らかにされる。
本開示は、本明細書に記載されている少なくとも1つのDVD−Igを使用して試験試料中の分析物(またはその断片)の存在、量または濃度を決定する方法も提供する。本分野において知られているあらゆる適切なアッセイは、この方法において使用することが可能である。例として、サンドイッチイムノアッセイ(例えば、放射性同位体検出(ラジオイムノアッセイ(RIA))および酵素検出(エンザイムイムノアッセイ(EIA)または酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)(例えば、Quantikine ELISAアッセイ、R&D Systems,Minneapolis,MN))を含むモノクローナル、ポリクローナルおよび/もしくはDVD−Igサンドイッチイムノアッセイまたはそのあらゆるバリエーション(例えば、モノクローナル/DVD−Ig、DVD−Ig/ポリクローナルなど))、競合阻害イムノアッセイ(例えば、順向および逆向)、蛍光偏光イムノアッセイ(FPIA)、酵素増幅イムノアッセイ技術(EMIT)、生物発光共鳴エネルギー移動(BRET)および均一系化学発光アッセイなどのイムノアッセイが含まれるが、これらに限定されない。予め活性化されたプロテインチップアレイなど、SELDIを基礎とするイムノアッセイにおいて、目的の分析物(またはその断片)に特異的に結合する捕捉試薬は、質量分析プローブの表面に付着している。分析物(またはその断片)は、次いで、バイオチップ上で特異的に捕捉され、捕捉された分析物(またはその断片)は、質量分析によって検出される。あるいは、分析物(またはその断片)は、捕捉試薬から溶出させ、伝統的なMALDI(マトリックス支援レーザー脱離/イオン化)またはSELDIによって検出することが可能である。化学発光微粒子イムノアッセイ、特にARCHITECT(登録商標)自動分析器(Abbott Laboratories,Abbott Park,IL)を使用するものは、好ましいイムノアッセイの例である。
(a)対象から得られた試験試料における分析物(またはその断片)の濃度または量を(例えば、本明細書に記載されている方法または本分野において知られている方法を使用して)決定する工程および
(b)工程(a)において決定された分析物(またはその断片)の濃度または量を所定のレベルと比較する工程を含み得、工程(a)において決定された分析物の濃度または量が所定のレベルに対して好ましい場合、対象は、所与の疾患、障害または状態を有さずまたはこれらのリスクがないと決定される。しかし、工程(a)において決定された分析物の濃度または量が所定のレベルに対して好ましくない場合、対象は、所与の疾患、障害または状態を有するまたはこれらのリスクがあると決定される。
(a)対象から得られた試験試料における分析物の濃度または量を決定する工程、
(b)対象から得られた後の試験試料における分析物の濃度または量を決定する工程および
(c)工程(b)において決定された分析物の濃度または量を工程(a)において決定された分析物の濃度または量と比較する工程を含み、工程(b)において決定された濃度または量が、工程(a)において決定された分析物の濃度または量と比較して変化していないまたは好ましくない場合、対象における疾患は継続、進行または悪化していると決定される。比較すると、工程(b)において決定された分析物の濃度または量が、工程(a)において決定された分析物の濃度または量と比較して好ましい場合、対象における疾患は消失、退行または改善していると決定される。
試験試料における分析物(またはその断片)の存在、量または濃度について試験試料をアッセイするためのキットも提供される。キットは、分析物(またはその断片)について試験試料をアッセイするための少なくとも1つの成分および分析物(またはその断片)について試験試料をアッセイするための説明書を含む。分析物(またはその断片)について試験試料をアッセイするための少なくとも1つの成分は、任意に固相に固定化されている抗分析物DVD−Ig(またはその断片、バリアントもしくはバリアントの断片)を含む組成物を含み得る。
本明細書に記載されているイムノアッセイなどのアッセイによって試験試料における分析物の存在、量または濃度を決定するキット(またはその成分)ならびに方法は、例えば、米国特許第5,089,424号および第5,006,309号に記載され、例えば、Abbott Laboratories(Abbott Park,IL)によってARCHITECT(登録商標)として商業的に販売されている(固相が微粒子を含むものを含めて)様々な自動化システムおよび半自動化システムにおける使用に適合させることが可能である。
実施例1.1:親抗体およびDVD−Igを特定し、特徴付けるために使用させるアッセイ
以下のアッセイは、別段の記載がない限り、親抗体およびDVD−Igを特定し、特徴付けるために、実施例全体で使用される。
実施例1.1.1.A:ELISAアッセイ
所望の標的抗原に結合する抗体をスクリーニングするための酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)を以下のように行う。
ELISAプレート(Corning Costar,Acton,MA)をリン酸緩衝生理食塩水(PBS)中の5μg/mlのヤギ抗マウスIgG Fc特異的(Pierce #31170,Rockford,IL)の50μL/ウェルを用いて一晩4℃にて被覆する。0.05%Tween−20を含むPBSを用いてプレートを1回洗浄する。プレートは、PBS中の2%に希釈されたブロッキング溶液(BioRad #170−6404,Hercules,CA)を室温において1時間、200μL/ウェルで添加することによってブロックされる。0.05%Tween−20を含むPBSでブロックした後、プレートを1回洗浄する。
プロスタグランジンE2に結合する抗PGE2抗体またはDVD−Ig分子を含む抗PGE2についてスクリーニングするための酵素結合免疫吸着検定法を以下のように行った。ELISAプレート(Costar 3369,Corning,NY)は、PBS(Invitrogen Carlsbad,CA)中、2μg/mlの抗宿主Fc IgG(Sigma,St.Louis,MO)の50μlを用いて被覆された。4℃で一晩温置後、200μlのSuperblook(Pierce #37535,Rockford,IL)を用いてプレートをブロックした。IgGまたはDVD−Igを含む試料は、アッセイ緩衝液(0.05%Surfactamps(Pierce #37535,Rockford,IL)を含むPBS中の10%Superblook)中で1μg/mlに希釈され、プレート上で50μl/ウェルにて1時間室温で温置された。温置後、TTBS(Tween−Tris緩衝溶液)を用いてプレートを4回洗浄した。PGE2結合について、PGE2−ビオチンアミド(Cayman Chemicals,Ann Arbor,MI)を30nMに希釈し、アッセイ緩衝液中に連続して希釈した。滴定曲線は、50μl/ウェルの体積にて各IgGまたはDVD−Ig試料に添加され、1時間室温にて温置された。プレートを前述したように洗浄し、50μl/ウェルの1:5000に希釈したアッセイ緩衝液中のストレプトアビジンpolyhrp40(Fitzgerald Industries,Concord,MA)を添加し、45分間室温にて温置した。最終洗浄工程を行い、一工程のTMBシステム(Sigma #T8665,St.Louis,MO)および2NのH2SO4を用いて発色させた。Molecular Devices社のSpectramaxプレートリーダー(Sunnyvale,CA)上で450nmにてプレートを読んだ。GraphPad Prism 5(GraphPad Software,La Jolla,CA)を用いてEC50を測定した(図2)。
あるいは、抗体またはDVD−Ig分子についてのプロスタグランジン結合スクリーニングは、3H−PGE2 ELISAを用いて測定され得る。PBS中の5μg/mlのヤギ抗ヒトIgG(Fc)(Thermo Scientific #31170,Hudson,NH)またはヤギ抗マウスIgG(Fc)(Thermo Scientific #31125,Hudson,NH)を用いて50ul/ウェルにてプレートを被覆し、一晩4℃で温置した。翌日、プレートを軽く振って、吸い取って乾燥させた。次に、200μL/ウェルのSuperblook(Thermo Scientific #37515,Hudson,NH)を用いて、1時間室温にてプレートをブロックした。プレートを軽く振って、吸い取って乾燥させた。モノクローナル抗体をPBST(Abbott Bioresearch Center,Worcester,MA)/10%Superblookで0.04μg/mlに希釈し、50μLの各抗体またはDVD−Igは、予めブロックされたELISAプレートの各ウェルに2ng/ウェルにて添加され、1時間室温にて温置された。PBS+0.1%Tween−20を用いてウェルを3回洗浄した。3H−PGE2(Perkin Elmer #NET−428,Waltham,MA)の連続的な3倍滴定がPBST+10%Superblook中に調製された。次に、50μlの3H−PGE2溶液をプレートの各ウェルに添加し、1時間室温にて温置した。PBST+10%Superblookでウェルを6回洗浄し、50μLのシンチレーション液(Perkin Elmer #6013621,Waltham,MA)を各ウェルに添加した。5分のカウント遅延でプレートをTopCountリーダー(Perkin Elmer,Waltham,MA)を用いて読んだ。EC50値は、GraphPad Prisme 5(GraphPad Software,La Jolla,CA)を用いて測定された。
プロスタグランジンE2に結合する抗PGE2抗体または抗PGE2を含むDVD−Ig分子に対するプロスタグランジン結合特異性を決定するための競合酵素結合免疫吸着検定法を以下のように行った。
ELISAプレート(Costar 3369,Corning,NY)は、PBS(Invitrogen,Carlsbad,CA)中の2μg/mlの抗宿主Fc IgG(Sigma,St.Louis,MO)の50μl/ウェルを用いて被覆された。4℃にて一晩温置後、200μlのSuperblook(Pierce #37535,Rockford,IL)を用いてプレートをブロックした。IgG試料は、アッセイ緩衝液(0.05%Surfactamps(Pierce #37535,Rockford,IL)を含むPBS中の10%Superblook)中で6μg/mlに希釈された。PGE2結合のために、PGE2−ビオチンアミドをアッセイ緩衝液において3nMに希釈した。アッセイ緩衝液における滴定曲線は、300nMで開始し、1:10の連続希釈することによってプロスタグランジンPGA2(Cayman Chemicals,Ann Arbor,MI)、PGD2(Cayman Chemicals,Ann Arbor,MI)およびPGE2(Cayman Chemicals,Ann Arbor,MI)について調製された。ウェルあたり各々50μlの体積にて試薬を管に添加し、1時間室温にてプレ温置した。プレ温置後、ブロックされたプレートにその混合物を移し、1時間室温にて温置させた。次に、Tween 20−Tris緩衝溶液(TTBS)を用いてプレートを4回洗浄した。次に、1:5000に希釈したアッセイ緩衝液(Fitzgerald Industries,Concord,MA)中のストレプトアビジンpolyhrp40をウェルに添加し、45分間室温にて温置した。最終洗浄工程を行い、1回工程のTMBシステム(Sigma #T8665,Sigma,St.Louis,MO)および2NのH2SO4を用いてプレートを発色させた。Molecular Devices社のSpectramaxプレートリーダー(Sunnyvale,CA)上で450nmにてプレートを読んだ。未標識のプロスタグランジンが結合についてPGE2−ビオチンアミドと競合したウェルは、シグナルの減少をもたらした。IC50値は、GraphPad Prisme 5(GraphPad Software,La Jolla,CA)を用いて測定された。次に、交差反応性指数をPGE2のIC50/他の(複数の)プロスタグランジンのIC50によって計算した。
あるいは、3H−PGE2競合ELISAを用いて標的選択性を決定した。PBS中のuL/mlのヤギ抗ヒトIgG(Fc)(Thermo Scientific #31170,Hudson,NH)またはヤギ抗マウスIgG(Fc)(Thermo Scientific #31125,Hudson,NH)の50μL/ウェルを用いてプレートを被覆し、一晩4℃で温置した。翌日、プレートを軽く振って、吸い取って乾燥させた。次に、200μL/ウェルのSuperblook(Thermo Scientific #37515,Hudson,NH)を用いて、1時間室温にてプレートをブロックした。プレートを軽く振って、吸い取って乾燥させた。モノクローナル抗体をPBST(Abbott Bioresearch Center,Worcester,MA)+10%Superblook中に0.04μg/mlに希釈し、各々の50μLは、予めブロックされたELISAプレートの各ウェル(2ng/ウェル)に添加され、1時間室温にて温置された。PBS+0.1%Tween−20を用いてウェルを3回洗浄した。3H−PGE2(Perkin Elmer #NET−428,Waltham,MA)は、PBST+10%Superblook中に6nMに希釈された(2×ストック)。各プロスタグランジン(Cayman Chemicals,Ann Arbor,MI)は、2000μM(2×ストック)−0.00004μM(2×)の範囲の様々な濃度でPBST+10%Superblook中に調製された。3H−PGE2容積および各プロスタグランジン希釈液の等体積を混合した。次に、この混合物の50μlをプレートの各ウェルに添加し、1時間室温にて温置した。PBST/10%Superblookを用いてウェルを手動で6回洗浄し、50μLのシンチレーション液(Perkin Elmer #6013621,Waltham,MA)を各ウェルに添加した。5分のカウント遅延でプレートをTopCountリーダー(Perkin Elmer,Waltham,MA)を用いて読んだ。IC50値は、GraphPad Prism 5(GraphPad Software,La Jolla,CA)を用いて測定された。次に、PGE2のIC50/他の(複数の)プロスタグランジンのIC50によって交差反応性指数を計算した。
BIACOREアッセイ(BlAcore,Inc,Piscataway,NJ)は、結合(on−rate)定数および解離(off−rate)定数の反応速度測定を用いて抗体またはDVD−Igの親和性を測定する。標的抗原(例えば、精製された組み換え標的抗原)への抗体またはDVD−Igの結合は、BIAcore(登録商標)3000装置(BIAcore(登録商標)AB,Uppsala,Sweden)により、25℃で稼働しているHBS−EP(10mMのHEPES[pH7.4]、150mMのNaCl、3mMのEDTA、および0.005%サーファクタントP20)を用いて表面プラズモン共鳴に基づく測定によって決定される。すべての化学物質は、BIAcore(登録商標)AB(Uppsala,Sweden)から入手し、または他には本明細書に記載される別の供給元から入手した。例えば、10mM酢酸ナトリウム(pH4.5)中に希釈された、約5000RUのヤギ抗マウスIgG、(Fcγ)、断片特異的なポリクローナル抗体(Pierce Biotechnology Inc,Rockford,IL)は、製造業者の使用説明書に従って標準的なアミンカップリングキットおよび25μg/mlでの操作を用いてCM5研究等級のバイオセンサーチップ全体に直接固定化される。バイオセンサー表面上の未反応部分をエタノールアミンを用いてブロックする。フローセル2および4において修飾されたカルボキシメチルデキストラン表面を反応表面として使用する。フローセル1および3におけるヤギ抗マウスIgGなしの未修飾のカルボキシメチルデキストランを基準表面として使用する。反応速度分析のために、Biaevaluation 4.0.1ソフトウェアを用いて、8個すべての注入物の結合および解離相に対して、1:1ラングミュア(Langmuir)結合モデルから誘導された速度方程式を同時にフィッティングさせた(グローバルフィット分析を使用)。ヤギ抗マウスIgG特異的反応表面の全体で捕捉するために、HEPES緩衝生理食塩水中に、精製された抗体またはDVD−Ig試料を希釈する。リガンドとして捕捉されるべき抗体(25μg/ml)を5μl/分の流速で反応マトリックス全体に注入する。結合速度定数および解離結合定数のkon(M−1s−1)およびkoff(s−1)は、25μl/分の連続的流速下で決定される。10−200nMまたは1.25−1000mMの範囲の10個の異なる抗原濃度にて速度論結合測定を行うことによって速度定数を導く。次に、以下の式:KD=koff/konによって、速度論的速度定数から抗体またはDVD−Igおよび標的抗原間の反応の平衡解離定数(M)を計算する。結合を時間の関数として記録し、速度論的速度定数を計算する。このアッセイでは、106M−1s−1程度に速い速度定数、および10−6s−1程度に遅い解離定数を測定することができる。
実施例1.1.2.A:EP4バイオアッセイ
PGE2の細胞応答を阻害する抗PGE2抗体および抗PGE2を含むDVD−Ig分子の能力は、ヒトEP4受容体を安定に形質移入されたHEK293 Gα16細胞のCa++流出アッセイにおいて決定された。ブラック/透明ポリ−D−リジンプレート(Corning #3667,Corning,NY)に細胞を播種し、Ca++感受性色素(Molecular Devices)とともに90分間温置した。ストックPGE2(200標準エタノール中)をFLIPR緩衝液(1×HBSS(Invitrogen,Carlsbad,CA)、20mMのHEPES(Invitrogen,Carlsbad,CA)、0.1%BSA(Sigma,St.Louis,MO)および2.5mMのProbenecid(Sigma,St.Louis,MOを含む)を用いて希釈した。また、抗PGE2抗体、DVD−Ig分子またはアイソタイプ適合対照抗体をFLIPR緩衝液に予め希釈した。25μlのPGE2または予め温置されたPGE2/抗体混合物もしくは予め温置されたPGE2/DVD−Ig分子混合物は、細胞を予め播種したウェルに添加された。PGE2の用量反応は、PGE2の連続滴定によってなされ、FLIPR1またはTetra(Molecular Devices)を用いて決定された。EC50は、GraphPad Prisme 5(グラフトパッド・ソフトウェア(GraftPad Software,La Jolla,CA)を用いて決定された。抗体およびDVD−Ig分子を試験するために、EC50濃度のPGE2は、種々の濃度の被検物質またはアイソタイプ適合抗体(負の対照)とともに20分間温置され、HEK293 Gα16細胞の色素を有するヒトEP4に添加された。FLIPR1を用いてCa++流出をモニタリングし、GraphPad Prisme 5を用いてデータ分析した。
抗PGE2抗体によるPGE2受容体、例えば、EP4またはEP3へのPGE2結合の競合阻害は、3H−PGE2(プロスタグランジンE2、[5,6,8,11,12,14,15−3H(N)]、Perkin Elmer,Waltham,MA、カタログ#NET428250UC)を用いた、細胞系または膜系の受容体結合アッセイを使用して決定される。
TNFαによって誘導されるL929細胞(ATCC #CCL−1)の死を阻害する抗TNFα抗体および抗TNFα DVD−Ig分子の能力を以下のように分析した。L929細胞を回収し、4μg/mlアクチノマイシンを含むRPMIアッセイ培地中に1×106個の細胞/mlにて再懸濁した。96ウェルプレート(Costar)に50μl/ウェルにて最終濃度が5×104個の細胞/ウェルとなるように、第1日目に細胞を播種した。アクチノマイシンを含まないRPMIアッセイ培地に連続希釈することにより、DVD−Ig分子を試験するために調製した。次に、希釈試料は、50μl/ウェルの体積にて96ウェルプレートに添加された。マウスTNFα(A−846899.0)を連続的に希釈し、標準曲線を作成し、50μlを標準曲線ウェルに添加した。その曲線の最終濃度は、3ng/ml−0.0014ng/mlの範囲であった。中和のために、マウスTNFαは、最終濃度の100pg/mlについて50μlにてDVD試料ウェルに添加された。それらのウェルを最終体積200μl/ウェルにし、18時間37℃、5%CO2にて温置した。温置後、プレートを1200rpmにて遠心分離し、ウェルから100μlを取り出した。WST−1(Roche)を10μl/ウェルで細胞に添加し、プレートを37℃、5%CO2にて4時間温置した。プレートを1200rpmで遠心分離し、75μlをウェルから取り出し、ELISAプレート(Costar 3369)に移し、Molecular Devices社のSpectramaxプレートリーダーで420−600nmにて読んだ。中和DVDは細胞を死から保護し、明るいオレンジ色となった。
標的サイトカイン生物活性を阻害または中和する抗サイトカイン親抗体または抗サイトカイン配列を含むDVD−Igの能力は、抗体またはDVD−Igの阻害可能性を決定することにより分析される。例えば、IL−4を媒介したIgE産生を阻害する抗IL−4抗体の能力を用いることができる。例えば、ヒト未感作B細胞をそれぞれ末梢血から単離し、フィコール−パック密度遠心分離によって軟膜を単離し、その後、ヒトsIgD FITC標識されたヤギF(ab)2抗体に特異的なMACSビーズ(Miltenyi Biotech)、続く抗FITC MACSビーズを用いた磁気分離により単離した。磁気的に分類された未感作B細胞は、XV15中に3×105個の細胞/mlに調整され、プレートの中心に6×6アレイの96ウェルプレートのウェルあたり100μlを播種し、37℃にて10日間の培養中、5%CO2の存在下、ウェルを満たしたPBSによって取り囲まれた。試験されるべき抗体ごとに1プレートを各々調製し、誘導していない対照および誘導される対照、ならびに7μg/mlから開始し、50μlの4倍濃縮の前希釈に添加された29ng/mlの最終濃度まで3倍希釈して行う抗体力価の5点測定の繰り返しの各3ウェルからなっている。IgE産生を誘導するために、各50μlの20ng/mlのrhIL−4+最終濃度0.5μg/mlの抗CD40モノクローナル抗体(Novartis)を各ウェルに添加し、標準のサンドイッチELISA法によって培養期間の終わりにIgE濃度を決定した。
サイトカイン放出を引き起こす親抗体またはDVD−Igの能力を分析する。3人の健常ドナーから静脈穿刺によってバキュテナー管に末梢血を採取する。全血をRPMI−1640培地を用いて1:5に希釈し、24ウェル組織培養プレートに0.5mL/ウェルで播種する。抗サイトカイン抗体(例えば、抗IL−4)をRPMI−1640中に希釈し、0.5mL/ウェルでプレートに入れ、最終濃度を200、100、50、10、および1μg/mLにする。培養プレート中の全血の最終希釈は1:10である。LPSおよびPHAを添加し、サイトカイン放出の正の対照として、2μg/mLおよび5μg/mLの最終濃度にてウェルを分ける。ポリクローナルヒトIgGを負の対照抗体として用いる。実験は2点測定で行う。37℃、5%CO2にてプレートを温置する。24時間後、ウェルの内容物を試験管に移し、5分間、1200rpmにて遠心する。細胞不含の上清を回収し、サイトカインアッセイ用に凍結する。プレートおよびこれらの管に残った細胞を0.5mLの溶解液で溶解し、−20℃に置き、融解する。0.5mLの培地を加え(体積を細胞不含の上清試料と同じレベルにするため)、細胞調製物を回収し、サイトカインアッセイ用に凍結する。細胞不含の上清および細胞溶解物は、ELISAによって、サイトカインレベルについて、例えば、IL−8、IL−6、IL−1β、IL−1RA、またはTNF−αのレベルについてアッセイされる。
他のサイトカインと交差反応する、目的(複数の)サイトカインに対する抗サイトカイン親抗体またはDVD−Igの能力を分析する。親抗体またはDVD−IgをBIAcoreバイオセンサーマトリックスに固定化する。抗ヒトFc mAbは、最初に、デキストランマトリックス上のカルボキシル基を100mMのN−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)および400mMのN−エチル−N’−(3−ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミド塩酸塩(EDC)を用いて活性化することによって、デキストランマトリックスに遊離アミン基を介して共有結合される。酢酸ナトリウム(pH4.5)に希釈された、25μg/mLの濃度の各抗体またはDVD−Ig調製物の約50μLを、活性化されたバイオセンサーの全体に注入し、タンパク質の遊離アミンを、活性化されたカルボキシル基に直接結合させる。典型的には、5000共鳴単位(RU)を固定化する。未反応のマトリックスEDC−エステルは、1Mエタノールアミンの注入により不活性化される。第二のフローセルは、標準のアミンカップリングキットを用いて、ヒトIgG1/Kを固定化することによって、基準標準物質として調製される。SPR測定はCMバイオセンサーチップを用いて行われる。バイオセンサー表面上で分析されるべきすべての抗原は、0.01%のP20を含むHBS−EP泳動緩衝液中に希釈される。
組織交差反応性研究は3段階で行い、第一段階においては32組織の連結切片が含まれ、第二段階においては最大38組織が含まれ、第三段階においては以下に記載される3名の無関係な成人由来の追加組織が含まれる。研究は、典型的には、2つの投薬レベルにて行われる。
殺腫瘍活性について、腫瘍細胞上の標的抗原に結合する親抗体またはDVD−Igを分析することができる。要約すると、親抗体またはDVD−IgをD−PBS−BSA(0.1%BSAを含むダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水)に希釈し、最終濃度を0.01μg/mL−100μg/mLにしてヒト腫瘍細胞に添加する。37℃にて、加湿された5%CO2雰囲気において3日間、プレートを温置する。各ウェル中の生細胞数は、製造業者の使用説明書(Promega,Madison,WI)に従って、MTS試薬を用いて定量され、腫瘍増殖阻害の割合を決定する。抗体処理していないウェルは0%阻害の対照として用いられ、細胞を含まないウェルは100%阻害を示すものと考えられる。
細胞受容体またはそれらのリガンドに結合する親抗体またはDVD−Igは、受容体活性化の阻害について試験することができる。D−PBS−BSA(0.1%BSAを含むダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水)に希釈された親抗体またはDVD−Igは、最終濃度を0.01μg/mL−100μg/mLにしてヒト癌細胞に添加される。37℃にて、加湿された5%CO2雰囲気において1時間、プレートを温置する。濃度が1−100ng/mLである増殖因子(例えば、IGF1またはIGF2)は、5−15分間、細胞に添加され、受容体(例えば、IGF1R)の自己リン酸化を刺激する。抗体処理していないウェルは、0%阻害の対照として用いられ、増殖因子を用いて刺激していないウェルは100%阻害を示すと考えられる。細胞溶解物は、細胞抽出緩衝液(10mMのTris、pH7.4、100mMのNaCl、1mMのEDTA、1mMのEGTA、1mMのNaF、1mMオルトバナジウム酸ナトリウム、1%のTriton X−100、10%グリセロール、0.1%SDS、およびプロテアーゼインヒビターカクテル)とともに温置することにより作製される。これらの細胞溶解物中のホスホ−IGF1Rは、R&Dシステム(Minneapolis,MN)から購入される特異的ELISAキットを用いて決定される。
ヒト癌細胞は、インビトロにおいて、組織培養フラスコ中で99%の生存性であって、85%コンフルエントになるまで増殖させる。19−25グラムのSCID雌性または雄性マウス(Charles Rivers Labs)に耳標を付し、毛を剃る。次に、マウスは、研究0日に、0.2mlの2×106個のヒト腫瘍細胞(1:1マトリゲル)を右脇腹の皮下に摂取される。別々のマウス用ケージ内で、マウスが約150−200mm3の平均腫瘍体積を有するようにサイズ適合された後、ビヒクル(PBS)、抗体もしくはDVD−Igの投与(IP、Q3D/週)、および/または化学療法が開始される。移植の約10日後に開始し、週に2回、一対のキャリパーにより腫瘍を測定し、式V=L×W2/2(V:体積、mm3;L:長さ、mm、W:幅、mm)に従って腫瘍体積を計算する。腫瘍体積の減少は、ビヒクル単独またはアイソタイプ対照のmAbを受けた動物の腫瘍と比較して、抗体もしくはDVD−Ig単独または化学療法の併用により処置された動物において観察される。
目的の細胞表面抗原を過剰発現している安定な細胞株またはヒト腫瘍細胞株を組織培養フラスコから回収し、5%ウシ胎児血清を含むリン酸緩衝生理食塩水CPBS(PBS/FCS)に再懸濁させた。染色前に、ヒト腫瘍細胞は、PBS/FCS中の200μg/mlのヒトIgGとともに氷上で温置された。1−5×105個の細胞は、PBS/FCS中の抗体またはDVD−Ig(1−2μg/mL)とともに30−60分間、氷上で温置された。細胞を2回洗浄し、100μlのヤギ抗マウスIgG−フィコエリトリン(PBS/BSA中に1:300に希釈)(Jackson ImmunoResearch,West Grove,PA,Cat.#115−115−164)を添加した。氷上で30分の温置後、細胞を2回洗浄し、PBS/FCSに再懸濁した。Becton Dickinson FACSCalibur(Becton Dickinson,San Jose,CA)を用いて蛍光を測定した。
目的のヒト抗原およびそのバリアントに結合し、中和することができる親マウスmAbを次のように得る。
完全フロイントアジュバントまたはImmunoeasyアジュバント(Qiagen,Valencia,CA)と混合された組み換え精製ヒト抗原(例えば、IGF1、2)の20μgを5匹の6−8週齢のBalb/C、5匹のC57B/6マウス、および5匹のAJマウスに1日目に皮下注射する。24日目、38日目、および49日目に、不完全フロイントアジュバントまたはImmunoeasyアジュバントと混合された組み換え精製ヒト抗原バリアントの20μgを同じマウスに皮下注射する。84日目または112日目または144日目に、目的の組み換え精製ヒト抗原の1μgをマウスに静脈内注射する。
実施例1.2.Aに記載された免疫されたマウスから得た脾細胞は、ハイブリドーマを生成するために、Kohler,G.and Milstein(1975)Nature,256:495に記載の確立された方法に従って、SP2/O−Ag−14細胞と5:1の比で融合される。融合生成物は、ウェルあたり2.5×106個の脾細胞の密度で96ウェルプレート内のアザセリンおよびヒポキサンチンを含む選択培地に置かれる。融合の7−10日後、肉眼で見られるハイブリドーマのコロニーを観察する。ハイブリドーマのコロニーを含む各ウェルからの上清は、目的の抗原に対する抗体(実施例1.2.Aに記載される)の存在について、ELISAによって試験される。次に、抗原特異的活性を示す上清は、活性(実施例1.1.2のアッセイに記載される)、例えば、実施例1.1.2.Aに記載されるバイオアッセイなどのバイオアッセイにおいて目的の抗原を中和する能力について試験される。
実施例1.2.3.1:活性を中和する親モノクローナル抗体の分析
ハイブリドーマ上清は、目的の抗原に結合し、さらに、目的の抗原のバリアント(「抗原バリアント」)に結合することができる親抗体の存在についてアッセイされる。次に、両方のアッセイに陽性である抗体を含む上清は、それらの抗原中和効力について、例えば、実施例1.1.2のサイトカインバイオアッセイにおいて試験される。1000pM未満、ある実施形態では100pM未満のバイオアッセイにおけるIC50値を有する抗体を生成するハイブリドーマをスケールアップし、限界希釈によってクローニングする。ハイブリドーマ細胞は、10%の低IgGウシ胎児血清(Hyclone #SH30151,Logan,UT)を含む培地に増殖させる。平均して250mLの各ハイブリドーマ上清(クローン集団由来)を回収し、Harlow,E.and Lane,D.1988“Antibodies:A Laboratory Manual”に記載されるようにプロテインAアフィニティークロマトグラフィーによって濃縮および精製する。mAbの標的抗原の活性を阻害する、精製されたmAbの能力は、例えば、実施例1.1.2に記載されるサイトカインバイオアッセイを用いて決定される。
本明細書に記載されている選択されたmAbが目的のカニクイザル抗原を認識するかどうかを決定するために、組み換えカニクイザル標的抗原を用いて、BIACORE分析を本明細書に記載される(実施例1.1.1.C)ように実施する。さらにまた、サイトカインバイオアッセイ(実施例1.1.2)において、目的の組み換えカニクイザル抗原に対するmAbの中和効力を測定することができる。良好なサル交差反応性を有するmAb(ある実施形態では、ヒト抗原に対する5倍以内の反応性)が将来の特徴付けのために選択される。
組み換え抗ヒトマウスmAbのcDNAの単離、発現および特徴付けは以下のように行われる。各アミノ酸配列の決定について、約1×106個のハイブリドーマ細胞を遠心分離によって単離し、製造業者の使用説明書に従って処理し、トリゾール(Trizol)(Gibco BRL/Invitrogen,Carlsbad,CA)を用いて総RNAを単離する。総RNAは、製造業者の使用説明書を通じて、SuperScript First−Strand Synthesis System(Invitrogen,Carlsbad,CA)を用いて第一鎖DNA合成に供される。オリゴ(dT)を用いて、ポリ(A)+RNAについて選択するために第一鎖合成をプライムする。次に、第一鎖cDNA産物は、マウスの免疫グロブリン可変領域の増幅用に設計されたプライマー(Ig−プライマーセット、Novagen,Madison,WI)を用いたPCRによって増幅される。PCR産物をアガロースゲル上で分離し、切り出し、精製し、次に、TOPO(商標)クローニングキットを用いてpCR2.1−TOPO(商標)ベクター(インビトロゲン(Invitrogen)、カリフォルニア州カールスバッド)にサブクローニングし、およびTOP10の化学的にコンピーテントな大腸菌(E.coli)(Invitrogen,Carlsbad,CA)に形質転換される。コロニーPCRは、挿入物を含むクローンを特定するために形質転換体に対して実施される。プラスミドDNAは、QIAprepミニプレップキット(Qiagen,Valencia,CA)を用いて挿入物を含むクローンから単離される。プラスミド中の挿入物は、両鎖について配列決定され、M13フォワードおよびM13リバースプライマー(Fermentas Life Sciences,Hanover MD)を用いて、可変重鎖または可変軽鎖のDNA配列を決定する。mAbの可変重鎖および可変軽鎖の配列を特定する。ある実施形態では、次の工程の進行(ヒト化)のためのリードmAb集団についての選択基準は以下を含む:
抗体は、いずれのN結合のグリコシル化部位(NXS)も含有しないが、CH2における標準のものを除く。
抗体は、すべての抗体における通常のシステインに加えて、いずれの追加のシステインを含有しない。
抗体配列は、VHおよびVLについて最も近いヒト生殖細胞系配列と整列され、いずれの通常でないアミノ酸は、他の天然のヒト抗体における出現について照合される。
N末端のグルタミン(Q)は、抗体の活性に影響を及ぼさなければ、グルタミン酸(E)に変更される。これは、Qの環化による異質性(heterogeneity)を減少させることになる。
効果的なシグナル配列の切断は質量分析によって確認される。これは、COS細胞または293細胞材料とともに行うことができる。
タンパク質配列は、活性の喪失を導き得るAsnの脱アミド化の危険性について確認される。
抗体は低レベルの凝集を有する。
抗体の可溶性は、>5−10mg/ml(研究相における);>25mg/ml。
抗体は、動的光散乱(DLS)による通常のサイズ(5−6nm)を有する。
抗体は、低電荷異質性を有する。
抗体は、サイトカイン放出を欠如する(実施例1.1.2.E参照)。
抗体は、意図されるサイトカインに対する特異性を有する(実施例1.1.2.F参照)。
抗体は、予期せぬ組織交差反応性を欠如する(実施例1.1.2.G参照)。
抗体は、ヒトとカニクイザルの組織交差反応性との間に類似性を有する(実施例1.1.2.G参照)。
実施例1.3.1:組み換えキメラ抗ヒト親抗体の構築および発現
マウス抗ヒト親mAbの重鎖定常領域をコードするDNAは、細菌における相同組み換えによる2つのヒンジ領域のアミノ酸変異を含むヒトIgG1定常領域をコードするcDNA断片によって置換される。これらの変異は、234位(EU番号付け)のロイシンからアラニンの変更であり、235位のロイシンからアラニンの変更である(Lund et al.,1991,J.Immunol.,147:2657)。これらの抗体の各々の軽鎖定常領域は、ヒトκ定常領域によって置換される。全長のキメラ抗体は、pBOS発現プラスミドにキメラ重鎖および軽鎖のcDNAリガンドの同時の形質移入によってCOS細胞において一時的に発現される(Mizushima and Nagata,Nucleic Acids Research 1990,Vol 18,pg5322)。組み換えキメラ抗体を含む細胞上清は、プロテインAセファロースクロマトグラフィーによって精製され、結合した抗体は酸性緩衝液の添加によって溶出される。抗体は中和され、PBS中で透析される。
実施例1.3.2.1:ヒト抗体フレームワークの選択
各マウスの可変重鎖および可変軽鎖の遺伝子配列は、ベクターNTIソフトウェアを用いて、44個のヒト免疫グロブリン生殖細胞系列の可変重鎖または46個の生殖細胞系列の可変軽鎖配列(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/igblast/retrieveig.html.にてNCBI Ig Blastウェブサイトから導かれる)に対して別々に整列される。
機能的活性を阻害するための精製されたヒト化抗体の能力は、例えば、実施例1.1.2に記載されるようにサイトカインバイオアッセイを用いて決定される。組み換えヒト抗原に対するヒト化抗体の結合親和性は、実施例1.1.1.Cに記載されるように表面プラズモン共鳴(BIAcore(登録商標))測定を用いて決定される。ヒト化抗体のバイオアッセイからのIC50値および親和性を位置付ける。親ハイブリドーマmAbの活性を完全に維持するヒト化mAbは、将来の進行のための候補対象として選択される。上位2−3の最も有益なヒト化mAbをさらに特徴付ける。
薬物動態研究は、Sprague−Dawleyラットおよびカニクイザルにおいて行われる。雄性および雌性のラットならびにカニクイザルは、4mg/kgのmAbの単回投薬で静脈内または皮下に投薬され、抗原捕捉ELISAを用いて試料を分析し、薬物動態パラメーターを非コンパートメント分析によって決定する。要約すると、ヤギ抗ビオチン抗体(5mg/ml、4℃、一晩)を用いてELISAプレートを被覆し、Superblock(Pierce)を用いてブロックし、10%SuperblockのTTBS中の50ng/mlのビオチン化ヒト抗原とともに室温で2時間温置する。血清試料を連続的に希釈し(TTBS中の0.5%血清、10%Superblock)およびプレート上で30分間、室温にて温置する。HRP標識されたヤギ抗ヒト抗体を用いて検出を行い、4パラメーターのロジスティックフィットを用いて、標準曲線の助けにより濃度を決定する。薬物動態パラメーターに関する値は、WinNonlinソフトウェア(Pharsight Corporation,Mountain View,CA)を用いて、非コンパートメントモデルによって決定される。良好な薬物動態プロファイルを有するヒト化mAb(T1/2は8−13日またはそれより良好であり、低クリアランスおよび優れた生物学的利用率は50−100%である)を選択する。
実施例1.3.3.2.A:サイズ排除クロマトグラフィー
水を用いて抗体を2.5mg/mLに希釈し、20mLをTSKゲルG3000SWXLカラム(Tosoh Bioscience、カタログ#k5539−05k)を用いてShimadzu HPLCシステム上で分析する。211mM硫酸ナトリウム、92mMリン酸ナトリウム、pH7.0を用いて、流速0.3mL/分にて試料をカラムから溶出する。HPLCシステムの操作条件は以下の通りである:
移動相:211mMのNa2SO4、92mMのNa2HPO4*7H20、pH7.0
勾配:アイソクラチック
流速:0.3mL/分
検出波長:280nm
オートサンプラー冷却装置温度:4℃
カラムオーブン温度:周囲
実行時間:50分
還元条件下および非還元条件下でドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)によって抗体を分析する。Adalimumab(ロットAFP04C)を対照として用いる。還元条件について、100mMのDTTを含む2×トリスグリシンSDS−PAGE試料緩衝液(Invitrogen、カタログ#LC2676、ロット#1323208)と1:1で試料を混合し、60℃で30分間加熱する。非還元条件について、試料緩衝液と1:1で試料を混合し、100℃で5分間加熱する。還元試料(10mg/レーン)を12%プレキャストのトリス−グリシンゲル(Invitrogen、カタログ#EC6005box、ロット#6111021)上に装填し、非還元試料(10mg/レーン)を8%−16%プレキャストのトリス−グリシンゲル(Invitrogen、カタログ#EC6045box、ロット#6111021)上に装填する。SeeBlue Plus 2(Invitrogen、カタログ#LC5925、ロット#1351542)を分子量マーカーとして用いる。ゲルをXCell SureLockミニセルゲルボックス(Invitrogen、カタログ#EI0001)に入れ、最初に、ゲル内の試料を積層するために電圧75を加え、次にダイフロント(dye front)がゲルの底に到達するまで定電圧125にしてタンパク質を分離する。使用される泳動緩衝液は1×トリスグリシンSDS緩衝液であり、10×トリスグリシンSDS緩衝液(ABC、MPS−79−080106)から調製される。コロイド状青色染色(Invitrogen、カタログ#46−7015、46−7016)を用いてゲルを一晩染色し、バックグラウンドを除くためにMilli−Q水で脱染する。次に、Epson Expressionスキャナー(モデル1680、S/N DASX003641)を用いて、染色されたゲルをスキャンする。
3つの標準的な2セクターのカーボン・エポンセンターピースの各々の試料チャンバー内に抗体を装填する。これらのセンターピースは1.2cmの光路長を有し、サファイアウィンドウで構築される。基準緩衝液に関してはPBSを使用し、各チャンバーは140μLを含む。Beckman ProteomeLab XL−I分析用超遠心分離機(シリアル#PL106C01)の4ホール(AN−60Ti)ローターを用いて、すべての試料を同時に試験する。
試料細胞体積:420mL
基準細胞体積:420mL
温度:20℃
ローター速度:35,000rpm
時間:8:00時間
UV波長:280nm
半径刻み幅:0.003cm
データ回収:信号加算平均なしの1工程あたり1データポイント
スキャン総数:100
完全な抗体の分子量をLC−MSによって分析する。水を用いて各抗体を約1mg/mLに希釈する。タンパク質マイクロトラップ(Michrom Bioresources,Inc、カタログ#004/25109/03)を備えた1100HPLC(Agilent)システムを用いて、脱塩し、試料の5mgをAPI Qstarパルサーi質量分析計(Applied Biosystems)に導入する。短い勾配を用いて試料を溶出する。勾配は、移動相A(HPLC水中の0.08%TFA、0.02%TFA)および移動相B(アセトニトリル中の0.08%FAおよび0.02%TFA)を用いて、50mL/分の流速にて勾配を実行する。質量分析計は、4.5キロボルトの噴霧電圧で操作され、スキャン範囲は2000から3500の質量対電荷比である。
抗体軽鎖(LC)、重鎖(HC)および脱グリコシル化されたHCの分子量測定をLC−MSによって分析する。水を用いて抗体を1mg/mLに希釈し、試料は、最終濃度が10mMのDTTを用いて、30分間、37℃でLCおよびHCに還元される。抗体を脱グリコシル化するために、100mgの抗体は、100mLの全体積中の2mLのPNGase F、5mLの10%N−オクチルグルコシドとともに、一晩37℃にて温置される。脱グリコシル化後、最終濃度が10mMのDTTを用いて、試料を30分間、37℃にて還元する。C4カラム(Vydac、カタログ#214TP5115、S/N060206537204069)を備えたAgilent 1100HPLCシステムを用いて脱塩し、試料(5mg)をAPI Qstarパルサーi質量分析計(Applied Biosystems)に導入する。短い勾配を用いて試料を溶出する。勾配は、移動相A(HPLC水中の0.08%FA、0.02%TFA)および移動相B(アセトニトリル中の0.08%FAおよび0.02%TFA)を用いて、50mL/分の流速にて勾配を実行する。質量分析計は、4.5キロボルトの噴霧電圧で操作され、スキャン範囲は800から3500の質量対電荷比である。
75mM重炭酸アンモニウム中の最終濃度が6Mの塩酸グアニジンを用いて抗体を15分間、室温にて変性させる。変性試料は、最終濃度が10mMのDTTを用いて、37℃、60分間還元させ、次に、暗所にて37℃、30分間、50mMヨード酢酸(IAA)を用いてアルキル化される。アルキル化後、4リットルの10mM重炭酸アンモニウムに対して、一晩4℃で試料を透析する。透析された試料は、10mM重炭酸アンモニウム、pH7.8を用いて1mg/mLに希釈され、100mgの抗体は、1:20(w/w)トリプシン/Lys−C:抗体の比でトリプシン(Promega、カタログ#V5111)またはLys−C(Roche、カタログ#11 047 825 001)を用いて37℃で4時間消化される。消化物は、1NのHClを1mL用いてクエンチされる。質量分析計検出を用いたペプチドマッピングについて、40mLの消化物は、Agilent 1100HPLCシステムを備えた、C18カラム(Vydac、カタログ#218TP51、S/N NE9606 10.3.5)上で逆相高速液体クロマトグラフィー(RPHPLC)によって分離される。ペプチドの分離は、移動相A(HPLC等級の水中の0.02%TFAおよび0.08%FA)および移動相B(アセトニトリル中の0.02%TFAおよび0.08%FA)を使用する勾配を用いて、50mL/分の流速にて実行する。API QSTAR Pulsar i質量分析計は、4.5キロボルトの噴霧電圧のポジティブモードで操作され、スキャン範囲は800から2500の質量対電荷比である。
抗体を変性するために、100mLの抗体は、100mM重炭酸アンモニウム中の8MグアニジンHClの300mLと混合される。pHをチェックして、pHが7から8の間であることを確認し、最終濃度が6MのグアニジンHCl中で15分間、室温にて試料を変性させる。一部の変性試料(100mL)をMilli−Q水で600mLに希釈し、最終のグアニジン−HCl濃度を1Mとする。試料(220mg)は、1:50のトリプシン:抗体または1:50のLys−C:抗体(w/w)の比(4.4mg酵素:220mg試料)でトリプシン(Promega、カタログ#V5111、ロット#22265901)またはLys−C(Roche、カタログ#11047825001、ロット#12808000)を用いて37℃で約16時間消化される。さらに5mgのトリプシンまたはLys−Cを試料に添加し、消化をさらに2時間、37℃で進行させる。各試料に1mLのTFAを添加することによって消化を停止させる。消化された試料は、Agilent HPLCシステム上のC18カラム(Vydac、カタログ#218TP51、S/N NE020630−4−1A)を用いてRPHPLCによって分離される。分離は、移動相A(HPLC等級の水中の0.02%TFAおよび0.08%FA)および移動相B(アセトニトリル中の0.02%TFAおよび0.08%FA)を用いて、ペプチドマッピングについて使用されたものと同じ勾配で50mL/分の流速にて実行する。HPLCの操作条件は、ペプチドマッピングについて使用された条件と同じである。API QSTAR Pulsar i質量分析計は、4.5キロボルトの噴霧電圧のポジティブモードで操作され、スキャン範囲は800から2500の質量対電荷比である。ジスルフィド結合は、ペプチドの実測されたMWと、ジスルフィド結合によって連結されたトリプシンまたはLys−Cペプチドの予測されたMWとを合致させることによって割り当てられる。
抗体中の遊離システインを定量するために使用される方法は、特徴的な発色生成物である5−チオ−(2−ニトロ安息香酸)(TNB)を生じさせる、エルマン試薬である5,5¢−ジチオ−ビス(2−ニトロ安息香酸)(DTNB)とスルフヒドリル基(SH)の反応に基づいている。反応は、式:
DTNB + RSH(登録商標)RS−TNB + TNB− + H+
において説明される。
10mMリン酸ナトリウム、pH6.0を用いて抗体を1mg/mLに希釈する。電荷異質性は、WCX−10 ProPac分析用カラム(Dionex、カタログ#054993、S/N02722)を備えたShimadzu HPLCシステムを用いて分析される。試料を80%移動相A(10mMリン酸ナトリウム、pH6.0)および20%移動相B(10mMリン酸ナトリウム、500mMのNaCl、pH6.0)においてカラムに充填し、1.0mL/分の流速で溶出する。
抗体のPNGase F処理後に放出されるオリゴ糖は、2−アミノベンズアミド(2−AB)標識試薬を用いて誘導される。蛍光標識されたオリゴ糖は、順相の高速液体クロマトグラフィー(NPHPLC)によって分離され、異なる形態のオリゴ糖は、保持時間に基づいて、既知の標準と比較して特徴付けられる。
抗体の緩衝液は、5.57mMリン酸一水素ナトリウム、8.69mMリン酸二水素ナトリウム、106.69mMのNaCl、1.07mMクエン酸ナトリウム、6.45mMクエン酸、66.68mMマンニトール、0.1%(w/v)Tween、pH5.2;または10mMヒスチジン、10mMメチオニン、4%マンニトール、pH5.9のいずれかであり、Amicon超遠心フィルターを用いる。適切な緩衝液を用いて、抗体の最終濃度を2mg/mLに調整する。次に、抗体溶液を濾過滅菌し、0.25mLのアリコートを無菌条件下で調製する。アリコートを−80℃、5℃、25℃または40℃で1、2または3週間放置する。温置期間の終わりに、サイズ排除クロマトグラフィーおよびSDS−PAGEによって試料を分析する。
水溶液中のタンパク質は、天然の(フォールドされた)立体構造と変性させた(フォールドされていない)立体構造との間で平衡にある。天然状態の安定性は、システムのギブス自由エネルギー(DG)の規模およびエンタルピー(DH)とエントロピー(DS)変化の熱力学的関係に基づいている。正のDGは、変性状態よりも安定であることを示す−DGがより正になれば、安定性が大きくなる。タンパク質をアンフォールドするためには、安定化力を壊す必要がある。立体構造エントロピーは、エントロピーが優性となる温度にてタンパク質をアンフォールドさせる安定化力を超える。示差走査熱量測定(DSC)は、熱変性によりタンパク質のアンフォールディングのDHを測定する。原則として、遷移中間点(Tm)が高くなると、タンパク質は低温でより安定になる。同じ実験中、DSCはまた、タンパク質変性のために熱容量(DCp)の変化も測定する。タンパク質のアンフォールディングと関連した熱容量変化は、主に、天然の状態では埋まっていたが、変性状態では溶媒曝露されるようになる側鎖の水和の変化に起因する。DSCは、タンパク質および他の生体高分子に関する液剤安定性を予測する(Remmele,R.L.et al.(2000)BioPharm 13:36−46;Remmele,R.L.et al.(1998)Pharm.Res.15:200−208)。
2つの抗原に結合することができるDVD−Ig分子は、2つの親モノクローナル抗体を用いて構築され、1つはヒト抗原Aに対し、他方はヒト抗原Bに対し、本明細書に記載されるように選択される。
ADCC/CDCエフェクター機能を排除するために、234および235に変異を有するγ1 Fcを含む定常領域を用いる。4種の抗A/B DVD−Ig構築物を生成する:2つは短いリンカーを有し、2つは長いリンカーを有し、各々は2つの異なるドメイン配向にある:VA−VB−CおよびVB−VA−C(表3を参照)。リンカー配列は、ヒトC1/CkまたはCH1ドメインのN末端配列から誘導され、以下の通りである:
DVDAB構築物について:
軽鎖(抗Aがλを有する場合):短いリンカー:QPKAAP(配列番号15);長いリンカー:QPKAAPSVTLFPP(配列番号16)。
軽鎖(抗Aがκを有する場合):短いリンカー:TVAAP(配列番号13);長いリンカー:TVAAPSVFIFPP(配列番号14)。
重鎖(γ1):短いリンカー:ASTKGP(配列番号21);長いリンカー:ASTKGPSVFPLAP(配列番号22)。
DVDBA構築物について:
軽鎖(抗Bがλである場合):短いリンカー:QPKAAP(配列番号15);長いリンカー:QPKAAPSVTLFPP(配列番号16)。
軽鎖(抗Bがkである場合):短いリンカー:TVAAP(配列番号13);長いリンカー:TVAAPSVFIFPP(配列番号14)。
重鎖(γ1):短いリンカー:ASTKGP(配列番号21);長いリンカー:ASTKGPSVFPLAP(配列番号22)。
重鎖構築物DVDABHC−LLおよびDVDABHC−SLを生成するために、A抗体のVHドメインは、特異的プライマー(3’プライマーはそれぞれSL/LL構築物に対する短い/長い線状配列を含む)を用いてPCR増幅される;一方、B抗体のVHドメインは、特異的プライマー(5’プライマーはそれぞれSL/LL構築物に対する短い/長い線状配列を含む)を用いて増幅される。両方のPCR反応は、標準的なPCR技術および手法に従って行われる。2つのPCR産物をゲルで精製し、その後の重複PCR反応のための重複鋳型としてともに使用する。重複PCR産物は、標準的な相同組み換えアプローチを用いることによって、SrfIおよびSalIによって二重消化されたpBOS−hCγ1,z非a−哺乳類用発現ベクター(Abbott)にサブクローニングされる。
重鎖構築物DVDBAHC−LLおよびDVDBAHC−SLを生成するために、抗体BのVHドメインは、特異的プライマー(3’プライマーはそれぞれSL/LL構築物に対する短い/長い線状配列を含む)を用いてPCR増幅される;一方、抗体AのVHドメインは、特異的プライマー(5’プライマーはそれぞれSL/LL構築物に対する短い/長い線状配列を含む)を用いて増幅される。両方のPCR反応は、標準的なPCR技術および手法に従って行われる。2つのPCR産物をゲルで精製し、標準的なPCR条件を用いて、その後の重複PCR反応のために重複鋳型としてともに使用する。重複PCR産物は、標準的な相同組み換えアプローチを用いることによって、SrfIおよびSalIによって二重消化されたpBOS−hCγ1,z非a−哺乳類用発現ベクター(Abbott)にサブクローニングされる。
DVD−Igに取り込むために、特異的な抗原またはそれらのエピトープを認識する特異的抗体についての親抗体アミノ酸配列が、上述したハイブリドーマの調製によって得ることができ、または既知の抗体タンパク質もしくは核酸を配列決定することによって得ることができる。さらに、既知の配列は文献から得ることができる。これらの配列は、標準的なDNA合成または増幅技術を用いて核酸を合成するために使用することができ、標準的な組み換えDNA技術を用いて、細胞において発現させるために、発現ベクターに所望の抗体断片を組み入れることができる。
DVD−Igタンパク質を生成するために、DVD−Igベクター構築物を293細胞に形質移入する。使用された293の一時的な形質移入の手法は、Durocher et al.(2002)Nucleic Acids Res.30(2):E9およびPhamら(2005)Biotech.Bioengineering 90(3):332−44において公開された方法の変法である。形質移入において使用された試薬には以下のものが含まれる:
・130rpm、37℃および5%CO2に設定された加湿インキュベーター内で使い捨ての三角フラスコにおいて培養されるHEK293−6E細胞(National Research Council Canadaから入手されるEBNA1を安定に発現するヒト胎児腎臓細胞株)。
・培養液:FreeStyle 293発現培地(Invitrogen 12338−018)+25μg/mLジェネティシン(Geneticin)(G418)(Invitrogen 10131−027)および0.1%Pluronic F−68(Invitrogen 24040−032)。
・形質移入培地:FreeStyle 293発現培地+10mMのHEPES(Invitrogen 15630−080)。
・ポリエチレンイミン(PEI)保存液:25kDaの直鎖状PEI(Polyscience)を用いて調製され、−15℃未満で保存される1mg/mL無菌保存溶液、pH7.0。
・トリプトン供給培地:FreeStyle 293発現培地中のトリプトンN1(Organotechnie、19554)の5%w/v無菌保存液。
抗A/B DVD−Igの結合親和性は、タンパク質Aおよびタンパク質Bに対して、BIAcoreで分析される。BIAcoreによる多重結合研究によってDVD−Igの四価特性を調べる。一方、タンパク質Aおよびタンパク質Bに対するDVD−Igの中和効力は、それぞれ、本明細書中に記載されるバイオアッセイによって評価される。元の親mAbの親和性および可能性を最も保持しているDVD−Ig分子は、各mAbについて、本願明細書に記載された詳細な物理化学的および生物分析的(ラットPK)特徴付けに関して選択される。分析の収集に基づいて、最終の誘導DVD−Igは、安定なCHO細胞株の開発に進められ、CHO誘導材料は、安定性、カニクイザルにける薬物動態および有効性研究、ならびにプレフォーミュレーション活性において採用される。
マウスTNFαおよびPGE2に結合することができるDVD−Igを生成した。要約すると、親mAbは、2つの高親和性マウスAb、それぞれ抗TNFα(クローン8C11)および抗PGE2(クローン2B5−8.0)を含む。抗TNFαモノクローナル抗体クローン8C11ハイブリドーマのVL/VH遺伝子は、マウスIgプライマーキット(Novagen,Madison,WI)を用いたRT−PCRによって単離された。2B5−8.0のVL/VHタンパク質配列は、実施例1.2.4に記載されるように得て、DNA配列に変換した。軽鎖(例えば、ADAAP)および重鎖(例えば、AKTTPP)における2つの可変ドメイン間に異なるリンカーを用いた。これらのリンカー配列は、マウスCkおよびCH1のN末端から選択され、可変ドメインの自然な伸長であり、いくつかのFab結晶構造の分析に基づく有意な二次構造を含まない柔軟性のある立体構造を示す。PCRクローニングの詳細な手順を以下に記載する:
DVD−Ig分子を作製するための方法は、米国特許出願公開第20070071675号に記載されている。PGE2に特異的な種々の組み換え抗体についてのVHおよびVL領域のアミノ酸配列を表5に示す。重複PCRを用いて、マウスのリンカーを持たない(mNL)、マウスの短いリンカーを持つ(mSL)またはマウスの長いリンカーを持つ(mLL)6つのマウス抗マウスTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子を作製し、VHおよびVLのタンパク質配列を以下の表6に列挙する。それぞれ、DVD−Ig分子のVHをコードするDNAをマウス重鎖IgG1定常領域に融合し、DVD−Ig分子のVLをコードするDNAをマウス軽鎖k定常領域に融合させた。DVD−Ig分子のタンパク質発現および精製は、実施例1.3および米国特許出願公開第20070071675号に記載されたものと本質的に同じである。
DVD−Ig分子を作製するための方法は、米国特許出願公開第20070071675号に記載されている。重複PCRを用いて、ヒトのリンカーを持たない(hNL)、ヒトの短いリンカーを持つ(hSL)またはヒトの長いリンカーを持つ(hLL)6つのマウス抗マウスTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子を作製し、VHおよびVLのタンパク質配列を以下の表7に列挙する。それぞれ、DVD−Ig分子のVHをコードするDNAをヒト重鎖IgG1定常領域に融合し、DVD−Ig分子のVLをコードするDNAをヒト軽鎖k定常領域に融合させた。DVD−Ig分子のタンパク質発現および精製は、実施例1.3および米国特許公開第20070071675号に記載されたものと本質的に同じである。
実施例2.2.3.1:ヒトのリンカーを含む抗マウスTNFα/抗PGE 2 DVD−Ig分子のPGE 2 結合活性を特定するためのアッセイ
ヒトのリンカーを含む抗マウスTNFα/抗PGE 2 DVD−IgのPGE 2 結合活性を特定し、特徴付けるために使用されるアッセイは、3H−PGE 2 ELISAを含み、別段の記載がない限り、実施例1に記載されている。2B5−8.0、2B5−huSL−8C11および2B5−hLL−8C11およびPGE2は、それぞれ、KD値が334、238、383pMである。
ヒトのリンカーを含む抗マウスTNFα/抗PGE2 DVD−IgのPGE 2 中和活性を特定し、特徴付けるために使用されるアッセイは、EP4アッセイを含み、別段の記載がない限り、実施例1に記載されている。2B5−8.0、2B5−huSL−8C11および2B5−hLL−8C11は、それぞれ、20、20、64pMのIC50値でPGE 2 を中和した。
ヒトのリンカーを含む抗マウスTNFα/抗PGE 2 DVD−IgのTNFα結合活性を特定し、特徴付けるために使用されるアッセイは、ELISAを含み、別段の記載がない限り、実施例1に記載される。8C11、2B5−huSL−8C11および2B5−hLL−8C11は、それぞれ、201、234、256pMのIC50値でPGE 2 を中和した。
ヒトのリンカーを含む抗マウスTNFα/抗PGE 2 DVD−IgのTNFα中和活性を特定し、特徴付けるために使用されるアッセイは、L929アッセイを含み、別段の記載がない限り、実施例1に記載されている。8C11、2B5−huSL−8C11および2B5−hLL−8C11は、それぞれ、5852、4389、および88pMのIC50値でPGE 2 を中和した。2B5−hLL−8C11がマウスTNFαを中和するさらに多くの強力な活性を有するという正確な理由は明確でないが、マウスTNFαを含むDVD−Ig分子の複合体形成の動力学および大きさに関連する場合がある。
二重可変ドメイン免疫グロブリン(DVD−Ig)分子は、2種の親mAb由来の2種の軽鎖可変ドメイン(VL)が、直接的に直列にまたは組み換えDNA技術によって短いリンカーを介して、次の軽鎖定常ドメインに連結するように設計された。同様に、重鎖は、米国特許出願公開第20070071675号に開示された方法を用いて、直列に連結された2つの重鎖可変ドメイン(VH)、次の定常ドメインCH1およびFc領域を含む。ヒトDVD−Ig分子の定常領域は、ヒトIgG1、IgG2、IgG3、IgG4のいずれかであってもよい。
DVD−Ig分子の一般的な構築は、米国特許出願公開第20070071675号に記載されている。重複PCRを用いて、ヒトの短いリンカー(SL)およびヒトの長いリンカー(LL)を有する4つのヒト抗ヒトTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子を生成し、それらのVHおよびVLのタンパク質配列を以下の表8に列挙した。それぞれ、DVD−Ig分子のVHをコードするDNAをヒト重鎖IgG1定常領域と融合させ、DVD−Ig分子のVLをコードするDNAをヒト軽鎖k定常領域と融合させた。DVD−Ig分子のタンパク質発現および精製は、実施例1.3および米国特許公開第20070071675号に記載されるのと本質的に同じである。
抗ヒトTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子を特定し、特徴付けるためのアッセイは、ELISA、競合ELISA、3H−PGE 2 ELISAおよび/または3H−PGE 2 競合ELISA、受容体遮断アッセイを含み、別段の記載がない限り、実施例1.1に記載されている。
抗ヒトTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子の機能的活性を特徴付けるために使用させるアッセイは、EP4バイオアッセイを含み、別段の記載がない限り、実施例1.1に記載されている。4つのDVD−Ig分子のすべては、PGE2についての細胞アッセイにおいて同等の結合中和効力を維持した(表10)。
抗ヒトTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子の抗TNF活性を特定し、特徴付けるために使用されるアッセイは、ELISAおよびBIAcoreアッセイを含み、別段の記載がない限り、実施例1.1に記載されたアッセイと本質的に同じである。DVD−Ig分子である、N末端にD2E7を有するD2E7−SL−HU2B5.7およびD2E7−LL−HU2B5.7は、同等のTNFα結合親和性を維持し、一方、C末端にD2E7を有するHU2B5.7−SL−D2E7およびHU2B5.7−SL−D2E7は、TNFα結合親和性を有意に減少させた(表10)。
抗ヒトTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子の機能的抗ヒトTNFα活性を特徴付けるために使用されるL929アッセイは、別段の記載がない限り、実施例1.1.2.Cに記載されたアッセイと本質的に同じである。DVD−Ig分子である、N末端にD2E7を有するD2E7−SL−HU2B5.7およびD2E7−LL−HU2B5.7は、同等のTNFα中和活性を維持し、一方、C末端にD2E7を有するHU2B5.7−SL−D2E7およびHU2B5.7−SL−D2E7は、TNFα中和活性を有意に減少させた(表10)。
D2E7−SL−HU2B5.7がTNFαおよびPGE2を同時に中和することができるかどうかを決定するために、D2E7−SL−HU2B5.7を最初に1つの抗原を用いて予め飽和し、次に二次抗原の中和について試験した。D2E7−SL−HU2B5.7は、TNFαに予め結合させた場合、EP4アッセイにおいてPGE2に対する中和効力のいずれの減少も示さず、PGE2に予め結合させた場合、L929アッセイにおいてTNFαに対する中和効力のいずれの減少もなかった。
抗ヒトTNFα/抗PGE2 DVD−Ig分子の抗ヒト抗PGE2活性の機能的活性を特徴付けるために使用されるEP3受容体競合阻害アッセイは、別段の記載がない限り、実施例1に記載されている。EP受容体への3H−PGE2を遮断するD2E7−SL−HU2B5.7についてのIC50値は、70−120pMの範囲であった。
D2E7−SL−HU2B5.7のサイトカイン選択性は、実施例1に記載されるようにELISAによって評価された。26個の可溶性ヒトサイトカインの集団は、固定化されたビオチン化TNFαへの結合に対するD2E7−SL−HU2B5.7との競合について試験された。特異的競合結合は、TNFαを用いた場合にだけ生じた;他のサイトカインは、ビオチン化TNFαへの結合について、D2E7−SL−HU2B5.7との競合を示さなかった。このデータは、D2E7−SL−HU2B5.7がTNFαに非常に特異的であることを示唆する。
D2E7−Hu−2B5.7とヒト血液細胞との相互作用は、実施例1に記載されるように、サイトカイン放出および細胞表面結合を決定するためのアッセイによって調査された。これらのアッセイは、D2E7−Hu−2B5.7が炎症細胞の活性化を引き起こし、または血中の意図されていない細胞表面タンパク質に結合するかどうかを評価する手助けとなる。ヒト末梢血細胞とのCHO細胞由来のD2E7−Hu−2B5.7の温置は、対照値を上回るいずれのサイトカイン放出も誘導せず、これは、炎症細胞の活性を引き起こさないことを示唆した。
カラギナン誘導の足蹠浮腫は、先天性免疫機能の急性げっ歯類モデルである。炎症性薬物の皮内(ID)注射は、好中球および流動浮腫の急速な流入を引き起こし、約4時間でピークに達し、次に、マクロファージおよび単球の流入が起こり、約48時間でピークに達する。C57.BL/6マウス(8−10週齢、Jackson Laboratories,Bar Harbor,ME)は、PBS(左)または濃度が5.0mg/mL(150μg/マウス)のPBS中のλ−カラギナン(Sigma Aldrich,St.Louis,MO)(右)の30μLを用いて、後ろの足蹠にID注射された。後ろの足蹠の厚さは、基準(時間=0)およびカラギナン誘発の4時間後にDyerスプリングキャリパーモデル#310−119によって測定された。足の厚さについての有意差は、ステューデント両側t−検定において、各処置群についての平均した足の腫れとビヒクルを比較することによって決定された。
D2E7−SL−Hu2B5.7を無菌の生理食塩水(Baxter、ロットC755694)中に調製し、LPS誘発の18時間前に100、30、10、3、1mg/kgで雌性C57BL6/Nマウス(n=10)(8−10週齢、Jackson Laboratories,Bar Harbor,ME)内に腹腔内注射された。生理食塩水だけを負の対照として用いた。別の群は、mg/kgの8C11−1E10、抗マウスTNFモノクローナル抗体を正の対照として受け入れた。
実施例2.3.12.1:ヒトTNFαトランスジェニック誘導の関節炎モデル
4週齢のヒトTNFαトランスジェニックB6.Cg(SJL)−Tg(TNF)N21+マウス(40匹の雄および40匹の雌)(Taconic,Hudson,NY)を8匹(4匹の雄および4匹の雌/群)のマウスの10群に分割した。毎週、第5週齢から第12週齢まで、マウスの後ろ足関節の形態を評価し、関節炎の兆候および症状について記録した。関節炎のスコアを以下の通りに割り当てた。
0=関節炎なし(正常な外見および屈曲)
1=軽度の関節炎(関節湾曲)
2=中等度の関節炎(腫れ、関節変形);および
3=重度の関節炎(屈曲および重い障害のある動きに基づいて検出される関節強直)
疾患が複数のメカニズムによって導かれるコラーゲン誘導の関節炎モデルとは異なり、ヒトTNFαトランスジェニックマウスモデルにおける疾患は、主に、ヒトTNFαの過剰発現によって導かれる。疾患の症状は、典型的には9−10週で現れ、20週齢で完全に発症する。これらのマウスは、第10週と第12週との間で週に2回、D2E7−SL−Hu2B5.7、D2E7、または抗PGE2 mAb 2B5−8.0の同等用量を用いて処理された。疾患は第9週から開始して毎週記録され、平均関節炎スコアのAUCの阻害として表された。D2E7−SL−Hu2B5.7は、3mg/kg(30%)および10mg/kg(63%)群において、用量依存的に関節炎を低減させた。10mg/kg(63%)および30mg/kg(60%)の同等用量で達成された最大効果は、30mg/kgの抗ヒトTNFα mAb D2E7の最大効果(59%)と同等であった。2B5−8.0を用いたPGE2阻止からのこのモデルにおける疾患の進行に対する有意な効果はなく、それは、このモデルにおける関節炎が主にヒトTNFαによって導かれるためである。全体的に、これらの結果は、抗TNFα結合ドメインのインビボにおける活性を示した。
D2E7−SL−hu2B5.7−DVD−Igを用いた薬物動態研究は、Sprague−Dawleyラットおよびカニクイザルにおいて実施された。雄性および雌性ラットは、4mg/kg(ラット)または5mg/kg(サル)のD2E7−SL−hu2B5.7−DVD−Igの単回投薬で静脈内または皮下に投薬され、血清試料は、抗原捕捉に基づくケミルミネッセントMSD(Meso Scale Discovery)法を用いて分析された。薬物動態パラメーターは、WinNonlinを用いて非コンパートメント分析によって計算された。
以下のMSDアッセイを用いて、ラットにおけるDVD−Ig濃度を測定した。0.05%Tween−20(10×PBSで希釈、Abbott Bioresearch Center,Media Room,Worcester,MA、Tween−20、Sigma,St.Louis,MO)を含むリン酸緩衝生理食塩水を用いてMSDストレプトアビジンプレート(Meso Scale Discovery)を洗浄した。250μL/ウェルのブロッキング溶液(MSDブロック、Meso Scale Discovery、PBS中に3%最終濃度に希釈)を用いて1時間、カバーをして、室温で振とう(600rpm)しながらプレートをブロックした。
外科手術を受けた(頚静脈穿刺された、JVC)、および通常の雄性および雌性のSprague−Dawleyラット(約7週齢、体重240−390グラム)をCharles Rivers Laboratories(Wilmington,MA)から購入した。動物は、12時間の明/暗サイクルで、一定温度および湿度に維持された部屋に収納され、通常のげっ歯類用の食餌を与え、食餌および水を自由に与えるようにした。動物の水分補給および臨床状態を毎日モニタリングした。
実施例2.4.1:サイズ排除クロマトグラフィー
PBSを用いてD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料を1mg/mLに希釈し、TSKゲルG3000SWXLカラム(Tosho Bioscience、カタログ#08541)を備えたShimadzu HPLCシステムに20μLを注入した。100mM硫酸ナトリウム、100mMリン酸ナトリウム、1mMアジ化ナトリウム、pH6.8を用いて、0.5mL/分の流速でカラムから試料を溶出した。HPLCシステムの操作条件は以下であった。
勾配:アイソクラチック
流速:0.5mL/分
検出波長:280nm
オートサンプラー冷却装置温度:4℃
カラムオーブン温度:周囲
実行時間:30分
主要ピークは約16分で溶出した。約13分で溶出したピークは、凝集物と関係していた。単量体ピークは99.7%であり、凝集物ピークは0.3%であった。
還元条件下および非還元条件下で、ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)によってD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料を分析する。還元条件について、試料は、200mMのDTTを含む2×Tris−グリシンSDS試料緩衝液(Invitrogen、カタログ#LD2676)と1:1で混合され、70℃にて15分間加熱される。非還元条件について、試料は、2×Tris−グリシンSDS試料緩衝液と1:1で混合され、75℃にて15分間加熱される。還元試料および非還元試料の両方を8%−16%プレキャストTris−グリシンゲル(Invitrogen、カタログ#EC6045box)に装填した。マーク12の未染色標準(Invitrogen、カタログ#LC5677)を分子量マーカーとして用いた。XCell SureLockミニセルゲルボックス(Invitrogen、カタログ#EI0001)中でゲルを泳動し、ダイフトント(dye front)がゲルの底に到達するまで電圧を125vにしてタンパク質を分離した。使用した泳動緩衝液は1×Tris−グリシンSDS緩衝液であり、10×Tris−グリシンSDS緩衝液(ABC、MPS−79−080106)から調製した。コロイド状青色染色(Invitrogen、カタログ#46−7015、46−7016)を用いてゲルを一晩染色し、バックグラウンドを除くまでMilli−Q水で脱染した。フラットベッドの密度計(Bio−Rad、カタログ#GS−800)を用いて染色されたゲルをスキャンした。
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料をPBSに対して一晩透析した。試料をPBS中に希釈し、分析用遠心分離機内の1.2cm経路長セルにおいて280nmにておよその吸光度値として1.0を得る。この希釈によって、最終濃度が約0.5mg/mLになった。PBSを基準セルに使用した。SEDINTERP(V1.09)を用いて溶液密度、粘度、およびv−バー値を計算した。各DVD−Ig試料を独立して分析し、3つの同一な複製物が各試料について泳動された。1.2cmの光路長、サファイアウィンドウ、およびカーボンエポンセンターピースを有する標準の2セクターセル内に試料溶液および基準ブランクを装填した。Beckman ProteomeLab社のXL−I分析用超遠心分離機(シリアル#PL106C01)の4ホール(AN−60Ti)ローターを用いて、すべての試料を同時に試験した。
試料細胞体積:420μL
基準細胞体積:420μL
温度:20℃
ローター速度:35,000rpm
時間:8:00時間
UV波長:280nm
半径刻み幅:0.003cm
データ回収:信号加算平均なしの1工程あたり1データポイント
スキャン総数:100
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igの非還元および還元SDS−CEの両方を得た。Milli−Q水を用いてD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料を2mg/mLに希釈し、SDS−CE試料緩衝液と1:1で混合した。非還元試料について、タンパク質試料の1/10の体積の0.5Mヨードアセトアミド(Sigma、A3221−1VL)を添加した。還元試料について、1/10のタンパク質体積のβ−メルカプトエタノール(Sigma、M−7154)を代わりに添加した。試料をボルテックスし、70℃の水浴に移した。試料を15分間温置し、次に室温の水浴において停止した。試料バイアルを低速で簡単に遠心分離し、ボルテックスし、底に試料液体を回収した。試料をPCRバイアルに移し、分析のためにバイアルラックに置いた。ProteomeLab PA800キャピラリー電気泳動システム(Bechman Coulter)および被覆されていない裸の溶融石英キャピラリー(Bechman Coulter、P/N10663の一部)をSDSCE分析のために使用した。
PBS(GIBCO、20012)を用いて、D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料、2つの親分子D2E7およびHu2B5.7を2mg/mLに希釈した。DynaPro−801動的光散乱システムで測定する前に、試料を10,000RPMで10分間遠心分離した。D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igの流体力学半径は、6.43nmであった。D2E7およびHu2B5.7の平均流体力学半径は、それぞれ5.46nmおよび5.36nmであった。これらの結果は、D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igが2つの親分子の両方よりも大きな流体力学半径を有することを示し、これは、D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igが典型的なIgG1分子と比較して追加ドメインを有するという事実と一致している。
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料の完全な分子量および脱グリコシル化後の分子量をLC−MSによって分析した。水を用いて、各試料を約1mg/mLに希釈した。0.5μLの希釈試料は、Poroshell 300SB−C3カラム(Agilent、カタログ#661750−909)を備えたAgilent 6510 Q−TOF LC/MSシステム(Agilent G6510A、シリアル番号US65020122)に注入された。短い勾配(表16)を用いて試料を溶出した。勾配は、移動相A(水中の0.1%ギ酸、J.T.Baker、カタログ#9834−03)および移動相B(アセトニトリル中の0.1%ギ酸、J.T.Baker、カタログ#9832−03)を用いて、流速50μL/分にて行われた。質量分析計は、5キロボルトの噴霧電圧にて操作され、スキャン範囲は600から3200の質量対電荷比であった。D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igを脱グリコシル化するために、50μgのDVD−Ig試料を2.5μLの10%N−オクチルグルコシド(Sigma、カタログ#08001)および1μLのPNGase F(Prozyme、カタログ#GKE5006A)と混合する。Milli−Q水を各試料に添加して、全体積を50μLにした。試料を37℃にて17時間温置した。完全な分子量を得るために使用された、同じHPLCおよび質量分析条件を用いて、脱グリコシル化後の分子量を得た(表16)。
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig軽鎖(LC)、重鎖(HC)および脱グリコシル化されたHCの分子量測定をLC−MSによって分析した。水を用いてDVD−Ig試料を1mg/mLに希釈し、30分間37℃にて、最終濃度が25mMのDTTを用いて試料をLCおよびHCに還元した。0.5μLの希釈試料は、Poroshell 300SB−C3カラム(Agilent、カタログ#661750−909)を備えたAgilent 6510 Q−TOF LC/MSシステム(Agilent、G6510A、シリアル番号US65020122)に注入された。勾配(表17)は、移動相A(水中の0.1%ギ酸、J.T.Baker、カタログ#9834−03)および移動相B(アセトニトリル中の0.1%ギ酸、J.T.Baker、カタログ#9832−03)を用いて、流速50μL/分にて行われた。質量分析計は、5キロボルトの噴霧電圧で操作され、スキャン範囲は600から3200の質量対電荷比であった。脱グリコシル化されたDVD−Igは、30分間37℃にて、最終濃度が25mMのDTTを用いて還元された。脱グリコシル化された重鎖の分子量を上述したのと同じ条件を用いて得た。
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igのペプチドマッピングを以下のように行った:50mMの重炭酸アンモニウム(Mallinckrodt、カタログ#0155)を用いて、200μgのDVD−Ig試料を1mg/mLに希釈し、37℃にて30分間、10mMのDTT(EM Sciences、カタログ#3810)および6MグアニジンHCl(Pierce、製造番号24115)において、還元し、変性した。10μLの1Mヨード酢酸(Sigma、カタログ#T4386−100G)を添加し、暗所において37℃にて30分間、試料を温置した。還元され、変性され、アルキル化された試料を最初に4Lの50mM重炭酸アンモニウムに対して4℃にて30分間、slide−A−Lyzer(Pierce、製造番号66333)を用いて透析し、次に4Lの50mM重炭酸アンモニウムに対して一晩透析した。試料を回収し、トリプシン(Promega、カタログ#V511A)を用いて、1:20の酵素:タンパク質比(w/w)で37℃にて4時間消化した。2μLのTFA(J.T.Baker、カタログ#9470−01)の添加により消化を停止させた。試料をLC/MS分析のためにHPLCバイアルに移した。5μLの試料を注入し、Agilent 1200キャピラリーHPLCシステム上でVydac C18カラム(Vydac、カタログ#218MS51)を用いて逆相HPLCによって試料を分離する。カラムヒーターを60℃に設定した。緩衝液A(水中の0.1%FA、J.T.Baker、カタログ#9834−03)および緩衝液B(アセトニトリル中の0.1%FA、J.T.Baker、カタログ#9832−03)を用いた、表18に示される勾配により、流速50μL/分にて分離を行った。Agilent 6510 Q−TOF LC/MSシステム(Agilent、カタログ#G6510A、シリアル番号US65020122)をポジティブ電気スプレイモードにおいて操作する。質量分析計は、5.0キロボルトの噴霧電圧で操作され、スキャン範囲は200から3000の質量対電荷比である。
ジスルフィド結合マッピングは、非還元条件下におけるD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igのペプチドマップによって行われた。50mMの重炭酸アンモニウムを用いて、DVD−Ig試料の2つのアリコートを0.5mg/mLに希釈し、0.1%のRapiGest SF(Waters Corporation、部品番号186001861)中で65℃にて1時間変性した。各試料の全体積は100μLであった。試料をそれぞれトリプシン(Promega、カタログ#V511A)およびLyc−C(Roche Diagnostics、カタログ#11 047 825 001)を用いて消化した。トリプシン消化は、1:6.25の酵素:タンパク質比(w/w)で行い、Lys−C消化は、1:20の酵素:タンパク質比(w/w)で行い、ともに35℃にて約17時間行った。消化を1μLのTFAの添加によって停止させた。37℃にて30分間、試料を温置した。僅かな混濁が観察された。次に、試料を13,000RPMにて10分間、遠心分離した。加水分解性のRapiGest SF副産物は水に混和せず、いくらかの沈殿が観察された。上清をLC/MS分析のための試料バイアルに移した。Agilent 1200キャピラリーHPLCシステム上のVydac C18カラムを用いた逆相HPLCによって試料を分離した。カラムヒーターを60℃に設定した。流速50μL/分にて、緩衝液A(水中の0.1%FA)および緩衝液B(アセトニトリル中の0.1%FA)を用いて、表18に示されるペプチドマップのために使用されたのと同じ勾配により分離を行った。Agilent 6510Q−TOF LC/MSシステムをポジティブ電気スプレイモードにおいて操作した。質量分析計は、5.0キロボルトの噴霧電圧で操作され、スキャン範囲は200から3000の質量対電荷比であった。ペプチドの実測された分子量をジスルフィド結合によって連結されたトリプシンまたはLys−Cペプチドの予期された分子量と合致させることによって、ジスルフィド結合を帰属した。
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig中の遊離システインを定量するために使用される方法は、特徴的な発色生成物である5−チオ−(2−ニトロ安息香酸)(TNB)を生じさせる、エルマン試薬である5,5¢−ジチオ−ビス(2−ニトロ安息香酸)(DTNB)とスルフヒドリル基(SH)の反応に基づいていた。反応は、式:
DTNB + RSH(登録商標)RS−TNB + TNB− + H+
において説明される。
緩衝液A(10mMリン酸二水素ナトリウム、pH7.5)を用いて、D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料を1mg/mLに希釈し、ProPac WCX−10カラム(Dionex、ProPac WXC−10製品#054993、4mm×250mm)を用いる弱い陽イオン交換HPLC法によって分析した。表25は、WCX−10分析のためのHPLCシステム操作条件を示す。結果は、DVD−Igが19.3%の酸性種、65.2%の主要ピーク、および15.5%の塩基性種を有することを示した。
キャピラリーゾーン電気泳動は、キャピラリーが緩衝液で満たされるだけであるキャピラリー電気泳動法である。分離メカニズムは、分析物の電気泳動的移動性における差異に基づいていた。分子の電気泳動的移動性は、電荷対サイズ比に関係した。Beckman Coulter ProteomeLab PA800をCZE分析のために使用した。中性キャピラリー(eCAP中性、全長56cm、50μmのI.D.Beckman Coulter、P/N477441)を用いた。この方法は、試料導入口から20.2cmの検出ウィンドウを有する30.2cmのキャピラリーを用いる。泳動緩衝液は、5mLクエン酸塩/MES緩衝液(Beckman Coulter、カタログ#477443)と0.5mLの1%MC溶液(Convergent Bioscience、カタログ#101876)を混合し、10,000RPMにて2分間遠心分離することによって調製された。
抗体のPNGase F処置後に放出されたオリゴ糖を2−アミノベンズアミド(2−AB)標識試薬を用いて誘導した。蛍光標識されたオリゴ糖を順相高速液体クロマトグラフィー(NPHPLC)によって分離し、異なる形態のオリゴ糖を既知の標準と比較した保持時間に基づいて特徴付けた。
5mMリン酸ナトリウム、pH6.8を用いて、D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig試料を0.3mg/mLに希釈した。500μLの試料は、最初に5mMリン酸ナトリウム、pH6.8に対して20分間4℃にて透析され、次に同緩衝液に対して一晩4℃にて透析された。Slide−A−Lyzerカセットから試料を回収後、A280タンパク質吸光度を測定した。試料をさらに透析液を用いて0.15mg/mLに希釈し、最終的なA280値を0.221ODにする。5mMリン酸ナトリウム緩衝液、pH6.8は、バックグラウンドを差し引くために基準ブランクとして使用された。
示差走査熱量測定(DSC)は、実施例1.3.3.2.Lの方法に従って、D2E7およびD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igについて行われた。従来の抗体とは対照的に、DVD−Igは、理論的にはアンフォールドする可能性のある1つの追加ドメイン、すなわち、1つの追加のVH1およびVL1ドメインを含んでいた。想定された種々のドメインのアンフォールド遷移温度(Tm)が重複せずに、DSC分析によって特徴付けられ得る4つのアンフォールド遷移が予期され得る。D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igは4つの遷移を有し、58.8℃、68.6℃、75.0℃、および83.4℃にて決定され得る(図6)。さらに、これらのデータは、DVD−Ig分子が、功を奏する製品開発に対する非常に良好な候補とさせる良好な固有の立体構造安定性を有することを示し、これは、DVD−分子のドメインが、(56.9℃、67.4℃、および76.75℃のAdalimumabのTm値と比較して)生物製剤製品の推奨される保存温度よりも非常に高い58.8℃前でアンフォールドしないためである。
実施例3.1:生物物理化学的な特徴付けおよび製剤開発に適用される方法
試験される基準は、一般的な品質パラメーター(例えば、タンパク質含有量、pH)、固有の安定性(DSC)、物理的安定性(例えば、目視検査および光遮蔽型粒子計数によってモニタリングされる粒子汚染および不溶性凝集物および沈殿形成、SECによる断片化および凝集モニタリングを含む純度)、タンパク質の化学的安定性(例えば、脱アミド化、酸化、一般的な化学的安定性のためのIEC;SEC)を示すパラメーターにより変動した。さらに、優れた生物製剤の剤形に重要な特徴、例えば、高濃度溶液の粘度を種々の温度で測定した(コーンプレート粘度計)。
サイズ排除クロマトグラフィーを用いて、サイズに基づいてタンパク質を分離した。タンパク質は、水系移動相中で、カラムに装填された多孔性固定相樹脂を通して運ばれる。カラム中の保持時間は、タンパク質の流体力学的サイズ、および装填された樹脂床の微細孔のサイズの関数である。小さな分子は、樹脂の小さな微細孔に侵入し、大きな分子よりも長く保持され得る。カラムからの溶出により、タンパク質はUV吸収によって検出される。SEC法はTSKゲルガード(TOSOH Biosciences,Montgomeryville,PA、カタログ番号08543)、およびTSKゲルG3000SWxL(TOSOH Biosciences,Montgomeryville,PA、カタログ番号08541)を使用した。移動相は、100mMのNa2HPO4、200mMのNa2SO4、pH7.0であった。流速は0.3mL/分であった。注入体積は、1mg/mL試料の20μLであった。カラム温度は室温であった。オートサンプラー温度は2−8℃であった。全実行時間は50分であった。検出は、バンド幅を8nmに設定した214nm波長でのUV吸収に基づき、バンド幅を100nmにした360nmの基準波長を用いた。
Dionex Propac WCX−10 4×250mmカラム、p/n054993;4×50mMガード、p/n054994。緩衝液A:10mMのNa2HPO4、pH7.5、緩衝液B:10mMのNa2HPO4、500mMのNaCl、pH5.5。280nmでの検出、カラム温度35℃、流速1mL/分。
肉眼では見られない粒子の数は、米国薬局方の推奨に沿って、KLOTZ光遮蔽型粒子カウンターで測定された。3.5mLの試料は層流条件下で5mLの丸底管に充填され、測定はn=3モード(0.8mL/1回測定)において、各試料について初期の0.8mLの濯ぎ後に行われた。これらの表に与えられた粒子レベルは、タンパク質溶液1mLあたりの粒子数を指す。
霞み(haziness)、濁りおよび粒子形成などのタンパク質の物理的不安定性を示す兆候について、黒および白のバックグラウンドの両方に対して、タンパク質溶液を注意深く検査した。
タンパク質の溶解性は、タンパク質を100mg/mLに濃縮することによって、pH6(15mMヒスチジン)緩衝液中で評価された。
タンパク質粘度は、8から25℃の間で100/sの剪断速度にて、Brookfieldコーンおよびプレートレオメーター(plate rheometer)上で評価された。
DSC装置を用いて熱安定性を評価した。使用されたDSC装置は、Capillary Cell(Microcal)を備えた自動化VP−DSCであった。分子のアンフォールディングは、1mg/mLの試料について25℃−95℃の温度範囲の全体で、1℃/分のスキャン速度を適用して研究された。追加の測定パラメーターは次の通りであった:フィッティング時間:16秒、プレスキャンウェイト:10分、フィードバックモード:なし。個々の測定ごとに、420μLの試料/ブランクをDSC測定試料ホルダーに満たし、以下に示されるようにプレート充填スキームを用いた。以降に得られるサーモグラムは、異なる遷移の中間点温度およびエンタルピーを得るように、非2状態モデルにフィットさせた。
実施例3.2.1:推奨および促進される保存条件での幅広いpH範囲全体におけるD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig溶液の安定性
タンパク質安定性は、10mMリン酸塩、10mMクエン酸緩衝液システムにおいて、pH4からpH9の値のpH範囲内で2mg/mlにて評価された。安定性研究は、推奨される保存温度(2−8℃)および促進条件(40℃)にて少なくとも3カ月まで実施された。一般に、タンパク質の物理−化学的な安定性は、タンパク質が保存され、および/または調合されるpHおよび温度条件に非常に依存する。このようなストレス条件は、例えば、保存中の凝集、脱アミド化などの不安定性をもたらす可能性があり、安全性、有効性および一般的な製品品質に深刻な影響を及ぼし得る。巨大タンパク質に基づく、安定であり、安全な医薬製品を提供することは骨の折れる作業であり、非常に多くの場合、タンパク質の不安定性により製品の凍結乾燥を必要とし、より長期間にわたって安定性が維持されることが、一般には承認されている。前臨床モデルにおいて非常に有望な生物学的開発の候補は、不十分な安定性のために臨床開発に役に立たないということは稀ではない。
タンパク質安定性は、標準的な手法に従って実施される凍結融解研究を用いて、pH4からpH9の間の様々なpH値での1mg/mlの10mMリン酸塩、10mMクエン酸緩衝液システムで評価された。凍結は試料を−80℃にて少なくとも6時間維持することによって行われた。融解は30℃にて水浴中で行われた。一般に、タンパク質は、凍結処理中に作られる氷−水接触面で起こり得る変性に起因して、または低温変性および/または低温濃縮などの様々な他のパラメーターに起因して、凝集および肉眼で見られない粒子形成などの物理的な不安定性による影響を受けやすい。タンパク質は、(第一プロセスの単位操作として凍結を含む)バルク薬物物質および凍結された薬物製品などの凍結形態において通常保存されるため、凍結/融解処理の安定性は、製造操作および一般的な安定性要件の順守を与えるためのタンパク質の安定性の特徴の欠くことのできない部分を形成する。
pH4からpH8の間の1mg/mlの抗TNF−抗PGE2 DVD−IgGの熱安定性についてDSC装置を用いて評価した。DSCによって評価される熱安定性は、保存中のタンパク質分子の動力学的安定性に相関している。
また、凍結/融解負荷中のD2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Ig安定性を10mg/mlにてpH6の(15mMヒスチジン)緩衝液において評価した。試料を−80℃にて凍結し、30℃の水浴において融解した。
D2E7−SL−Hu2B5.7 DVD−Igの安定性は、種々の製剤条件下、2mg/mlにてpH6において評価された。安定性研究を2−8℃および40℃にて行った。
既知のアミノ酸配列を有する親抗体を用いた二重可変ドメイン免疫グロブリン(DVD−Ig)は、DVD−Ig可変重鎖およびDVD−Ig可変軽鎖配列をコードするポリヌクレオチド断片を合成し、実施例1.4.4.1に従ってpHybC−D2ベクターにその断片をクローニングすることによって生成された。DVD−Ig構築体は、実施例1.4.4.2に記載される293細胞にクローニングされ、発現された。標準的な方法に従ってDVD−Igタンパク質を精製した。機能的特徴付けは、示された実施例1.1.1および1.1.2に記載された方法に従って決定された。
以下のアッセイは、別段の記載がない限り、親抗体およびDVD−Igを同定し、特徴付けるために使用された。
実施例5.1.1:直接結合ELISA
所望の標的抗原に結合する抗体についてスクリーニングするための酵素結合免疫吸着検定法を以下のように行った。高結合ELISAプレート(Corning Costar #3369,Acton,MA)は、リン酸緩衝生理食塩水(10×PBS,Abbott Bioresearch Center,Media Prep #MPS−073,Worcester,MA)中の10μg/mlの所望の標的抗原(R&D Systems,Minneapolis,MN)もしくは所望の標的抗原細胞外ドメイン/FC融合タンパク質(R&D Systems,Minneapolis,MN)またはモノクローナルマウス抗ポリヒスチジン抗体(R&D Systems #MAB050,Minneapolis,MN)の100μL/ウェルを用いて一晩4℃にて被覆された。0.02%Tween 20を含むPBSを用いてプレートを4回洗浄した。300μL/ウェルのブロッキング溶液(無脂肪乾燥ミルク粉末、種々の小売供給業者、PBS中に2%に希釈される)の添加によって、1/2時間室温にてプレートをブロックした。ブロッキング後、0.02%Tween 20を含むPBSを用いてプレートを4回洗浄した。
BIACOREアッセイ(Biacore,Inc,Piscataway,NJ)は、結合定数および解離定数の反応速度測定を用いて抗体またはDVD−Igの親和性を決定する。標的抗原(例えば、精製された組み換え標的抗原)に対する抗体またはDVD−Igの結合は、泳動HBS−EP(10mM HEPES[pH 7.4]、150mMのNaCl、3mMのEDTA、および0.005%サーファクタントP20)を用いて25℃にて、Biacore(登録商標)1000または3000装置(Biacore(登録商標)AB,Uppsala,Sweden)により表面プラズモン共鳴に基づく測定により決定された。すべての化学物質は、Biacore(登録商標)AB(Uppsala,Sweden)から入手し、または他には本明細書に記載される別の供給元から入手される。例えば、10mM酢酸ナトリウム(pH4.5)中に希釈された、約5000RUのヤギ抗マウスIgG、(Fcγ)、断片特異的なポリクローナル抗体(Pierce Biotechnology Inc,Rockford,IL)は、製造業者の使用説明書に従って標準的なアミンカップリングキットおよび25μg/mlでの操作を用いてCM5研究等級のバイオセンサーチップ全体に直接固定化される。バイオセンサー表面上の未反応部分をエタノールアミンを用いてブロックする。フローセル2および4における修飾カルボキシメチルデキストラン表面を反応表面として使用する。フローセル1および3におけるヤギ抗マウスIgGなしの未修飾のカルボキシメチルデキストランを基準表面として使用する。反応速度分析のために、Biaevaluation 4.0.1ソフトウェアを用いて、8個すべての注入物の結合および解離相に対して、1:1ラングミュア(Langmuir)結合モデルから誘導された速度方程式を同時にフィッティングさせる(グローバルフィット分析を使用)。ヤギ抗マウスIgG特異的反応表面の全体で捕捉するために、HEPES緩衝生理食塩水中に、精製された抗体またはDVD−Igを希釈する。リガンドとして捕捉されるべき抗体またはDVD−Ig(25μg/ml)を5μl/分の流速で反応マトリックス全体に注入する。結合速度定数および解離結合定数のkon(M−1s−1)およびkoff(s−1)は、25μl/分の連続的流速下で決定される。10−200nMの範囲の異なる抗原濃度にて速度論結合測定を行うことによって速度定数を導く。次に、以下の式:KD=koff/konによって、速度論的速度定数から抗体またはDVD−Igおよび標的抗原間の反応の平衡解離定数(M)を計算する。結合を時間の関数として記録し、速度論的反応定数を計算する。このアッセイでは、106M−1s−1程度に速い速度定数、および10−6s−1程度に遅い解離定数を測定することができる。
MRC5細胞は、100μL体積中でウェルあたり1.5−2×104個の細胞にて播種され、一晩、37℃、5%CO2にて温置された。20μg/mLの抗体の作業保存液(4×濃縮)を完全MEM培地において調製した。8点の連続希釈は、Marsh希釈プレートにおいて完全MEM中で行われた(5μg/mL−0.0003μg/mL)。各抗体希釈物の65uL/ウェルを96ウェルのv底(Costar#3894)プレートに4重で添加し、200pg/mL溶液のIL−1αもしくはIL−1βの65μL、またはIL−1αおよびIL−1βの50pg/mL溶液を含む混合液の65μLを添加した。対照ウェルは65μLの200pg/mLのIL−1αもしくはIL−1βまたは50pg/mLの混合されたIL−1α/β(4×濃縮)+65μLのMEM培地を受け入れ、培地対照ウェルは130μLの培地を受け入れた。1時間の温置後、100μLのAb/Ag混合物をMRC5細胞に添加した。すべてのウェル体積は200μLに等しかった。次に、すべてのプレート試薬は1×濃縮であった。16−20時間の温置後、ウェル含有量(150μL)を96ウェル丸底プレート(Costar#3799)に移し、−20℃の冷凍庫に入れた。上清は、ヒトIL−8のELISAキット(R&D Systems,Minneapolis,MN)またはMSD hIL−8(ケミルミネッセンスキット)を用いて、hIL−8レベルについて試験された。中和効力は、IL−1α、IL−1β、またはIL−1α/β単独の対照値と比較した阻害率を計算することによって決定された。
ヒトHS27細胞株(ATCC #CRL−1634)はIL−17に応答してIL−6を分泌する。IL−17誘導のIL−6分泌は、中和抗IL−17抗体によって阻害される(例えば、J.Imm.155:5483−5486,1995またはCytokine 9:794−800,1997を参照されたい)。
プロスタグランジンE2に結合する抗PGE2抗体または抗PGE2を含むDVD−Ig分子についてスクリーニングするための酵素結合免疫吸着検定法を以下のように行った。
PGE2の細胞応答を阻害する抗PGE2抗体および抗PGE2を含むDVD−Ig分子の能力は、ヒトEP4を安定に形質移入されたHEK293 Gα16細胞のCa++流出アッセイにおいて決定された。ブラック/透明ポリ−D−リジンプレート(Corning #3667)に細胞を播種し、Ca++感受性色素(Molecular Devices)とともに90分間温置した。ストックPGE2(200標準エタノール中)をFLIPR緩衝液(1×HBSS、20mMのHEPES、0.1%BSAおよび2.5mMのProbenecidを含む)を用いて希釈した。また、抗PGE2抗体、DVD−Ig分子またはアイソタイプ適合対照抗体をFLIPR緩衝液に予め希釈した。25μlのPGE2または予め温置されたPGE2/抗体混合物もしくは予め温置されたPGE2/DVD−Ig分子混合物は、細胞を予め播種したウェルに添加された。PGE2の用量反応は、PGE2の連続的滴定によってなされ、FLIPR1またはTetra(Molecular Devices)を用いて決定された。EC50は、GraphPad Prisme 5を用いて決定された。抗体およびDVD−Ig分子を試験するために、EC50濃度のPGE2は、種々の濃度の被検物質またはアイソタイプ適合抗体(負の対照)とともに20分間温置され、HEK293 Gα16細胞の色素を有するヒトEP4に添加された。FLIPR1を用いてCa++流出をモニタリングし、GraphPad Prisme 5を用いてデータを分析した。
サイズ排除クロマトグラフィー
水を用いて抗体を2.5mg/mLに希釈し、20mLをTSKゲルG3000SWXLカラム(Tosoh Bioscience、カタログ#k5539−05k)を用いてShimadzu HPLCシステム上で分析する。211mM硫酸ナトリウム、92mMリン酸ナトリウム、pH7.0を用いて、流速0.3mL/分にて試料をカラムから溶出した。HPLCシステムの操作条件は以下の通りである:
移動相:211mMのNa2SO4、92mMのNa2HPO4 *7H2O、pH7.0
勾配:アイソクラチック
流速:0.3mL/分
検出波長:280nm
オートサンプラー冷却装置温度:4℃
カラムオーブン温度:周囲
実行時間:50分
目的の細胞表面抗原を過剰発現している安定な細胞株またはヒト腫瘍細胞株を組織培養フラスコから回収し、5%ウシ胎児血清を含むリン酸緩衝生理食塩水(PBS)(PBS/FBS)中に再懸濁させた。染色前に、ヒト腫瘍細胞は、PBS/FCS中の5μg/mlの(100μl)ヒトIgGとともに氷上で温置された。1−5×105個の細胞は、PBS/FBS中の抗体またはDVD−Ig(2μg/mL)とともに30−60分間、氷上で温置された。細胞を2回洗浄し、100μlのF(ab’)2ヤギ抗ヒトIgG、Fcγ−フィコエリトリン(PBS中に1:200に希釈)(Jackson ImmunoResearch,West Grove,PA,Cat.#109−116−170)を添加した。氷上で30分の温置後、細胞を2回洗浄し、PCS/FBSに再懸濁した。Becton Dickinson FACSCalibur(Becton Dickinson,San Jose,CA)を用いて蛍光を測定した。
基準抗体およびDVDの発現は、対応する軽鎖(LC)遺伝子および重鎖(HC)遺伝子を含むプラスミドを用いてHEK293(EBNA)細胞に一時的に同時に形質移入することによって達成された。HEK293(EBNA)細胞は、CO2インキュベーター(8%CO2、125RPM、37℃)中で振とうしているフラスコ(2L Corning、カタログ#431198)の0.5L規模にて新鮮な293培地(Invitrogen,Carlsbad CA)において増殖させた。培養物が1×106個の細胞/mlの密度に到達したとき、形質移入複合体を用いて細胞に形質移入した。形質移入複合体は、最初に150ugのLC−プラスミドおよび100ugのHC−プラスミドを一緒に25mlの新鮮な培地中で混合し、次に500ulのPEI保存溶液([保存溶液:1mg/ml(pH7.0)直鎖状25kDaのPEI、Polysciences、カタログ#23966]の添加によって調製された。形質移入複合体は反転によって混合され、細胞培養物に添加される前に室温にて10分間温置させた。形質移入後、CO2インキュベーター(8%CO2、125RPM、37℃)中で継続して細胞を増殖させた。形質移入の24時間後、25mlの10%トリプトンN1溶液(Organo Technie,La Courneuve France、カタログ#19553)を培養物に補足した。形質移入の9日後、遠心分離(16,000g、10分)によって培養物から細胞を取り除き、残った上清を滅菌濾過(Millipore HV Durapore Stericup,0.45um)し、精製工程の開始まで4℃に置いた。
抗A/B DVD−Igの結合親和性は、タンパク質Aおよびタンパク質Bに対して、Biacoreで分析される。BIAcoreによる多重結合研究によってDVD−Igの四価特性を調べる。一方、タンパク質Aおよびタンパク質Bに対するDVD−Igの中和効力は、それぞれ、本明細書中に記載されるバイオアッセイによって評価される。元の親mAbの親和性および効力を最も保持しているDVD−Ig分子は、各mAbについて、本明細書に記載された詳細な物理化学的および生物分析的(ラットPK)特徴付けに関して選択される。分析の収集に基づいて、最終の誘導DVD−Igは、安定なCHO細胞株の開発に進められ、CHO誘導材料は、安定性、カニクイザルにける薬物動態および有効性研究、ならびにプレフォーミュレーション活性において採用される。
本出願を通して引用されてもよい、すべての引用される参考資料(参考文献、特許、特許出願、データベースおよびウェブサイトを含む)の内容は、これによって、これらの参考資料がそこに記載されているかのように、いずれかの目的で参考資料の全体を参照することにより明確に組み込まれる。本発明の実施は、別段の記載がない限り、当該技術分野において周知である免疫学、分子生物学および細胞生物学の従来技術を使用する。
本発明は、その精神または本質的な特徴から逸脱せずに他の具体的な形態において体現されもよい。したがって、前述の実施形態は、本明細書に記載されている本発明を限定するというよりはむしろ、すべての点において例示していると考えるべきである。よって、本発明の範囲は、前述の記載によるというよりはむしろ、添付される特許請求の範囲によって示され、したがって、特許請求の範囲の意味および均等の範囲内にあるすべての変更は本明細書に包含されることが意図される。
Claims (19)
- 第一のポリペプチド鎖及び第二のポリペプチド鎖を含む結合タンパク質であって、前記ポリペプチド鎖は、それぞれ独立してVD1−(X1)n−VD2−C−(X2)n
(ここで、VD1は第一の可変ドメインであり、
VD2は第二の可変ドメインであり、
Cは定常ドメインであり、
X1はリンカーであり、
X2はFc領域であり、ならびに
nは0または1である。)を含み、
第一のポリペプチド鎖及び第二のポリペプチド鎖におけるVD1ドメインは、第一の機能的標的結合部位を形成し、第一のポリペプチド鎖及び第二のポリペプチド鎖におけるVD2は、第二の機能的標的結合部位を形成し、前記結合タンパク質は、プロスタグランジンE2(PGE2)に結合することができ、PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び配列番号111で表されるアミノ酸配列を含む、結合タンパク質。 - 第一のポリペプチド及び第二のポリペプチドを含む、請求項1に記載の結合タンパク質であって、前記ポリペプチド鎖は、それぞれ独立してVD1−(X1)n−VD2−C−(X2)n
(ここで、VD1は第一の可変ドメインであり、
VD2は第二の可変ドメインであり、
Cは定常ドメインであり、
X1はリンカーであり、
X2はFc領域であり、ならびに
nは0または1である。)を含み、
第一のポリペプチド鎖及び第二のポリペプチド鎖におけるVD1ドメインは、第一の機能的標的結合部位を形成し、第一のポリペプチド鎖及び第二のポリペプチド鎖におけるVD2は、第二の機能的標的結合部位を形成し、前記結合タンパク質は、下記に結合することができる、結合タンパク質。
(a)TNF及びPGE2、ここで、
(1)TNFについての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号112及び113で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、
(b)NGF及びPGE2、ここで、
(1)NGFについての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号32及び33で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、
(c)IL−17A及びPGE2、ここで、
(1)IL−17についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号34及び35で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、
(d)IL−1b及びPGE2、ここで
(1)IL−1bについての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号36及び37で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、
(e)IL−6R及びPGE2、ここで
(1)IL−6Rについての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号54及び55で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、
(f)VEGF及びPGE2、ここで
(1)VEGFについての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号28及び29で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、
(g)Abeta及びPGE2、ここで
(1)Abetaについての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号40及び41で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む、又は、
(h)IL−15及びPGE2、ここで
(1)IL−15についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号50及び51で表されるアミノ酸配列を含み、
(2)PGE2についての機能的結合部位を形成する可変ドメインは、配列番号110及び111で表されるアミノ酸配列を含む。 - 下記に結合することができる、請求項1又は2に記載の結合タンパク質。
(a)TNF及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)直接結合ELISAにより測定されたとき、少なくとも14×10 −12 MのIC 50 でTNFを阻害する、及び/又は、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても806×10 −12 Mの解離定数(K D )でTNFに結合する、及び
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、少なくとも45×10 −12 MのIC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても261×10 −12 Mの解離定数(K D )でPGE2に結合する、
(b)NGF及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.21×10 −9 MのIC 50 でNGFを阻害する、及び/又は、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても2.48×10 −10 Mの解離定数(K D )でNGFに結合する、及び、
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.3×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くても0.079×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する、
(c)IL−17A及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも248.1×10 −9 MのEC 50 でIL−17Aを阻害する、及び/又は、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても3.37×10 −9 Mの解離定数(K D )でIL−17Aに結合する、及び
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.55×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くても0.025×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する、
(d)IL−1b及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも2480.71×10 −9 MのEC 50 でIL−1bを阻害し、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても3.87×10 −11 Mの解離定数(K D )でIL−1bに結合し、及び/又は、IL−1b中和アッセイにより測定されたとき、多くても3.22×10 −9 MのEC 50 でIL−1bを中和する、及び、
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.23×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くとも0.217×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する、
(e)IL−6R及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも26,452.34×10 −9 MのEC 50 でIL−6Rを阻害する、及び/又は、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても4.48×10 −10 Mの解離定数(K D )ででIL−6Rに結合する、及び/又は、フローサイトメトリーで測定されたとき、少なくとも0.21のFACS幾何学平均によりIL−6Rに結合する、及び、
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.65×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くても0.036×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する、
(f)VEGF及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも391.23×10 −9 MのEC 50 でVEGFを阻害する、及び/又は、表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くても7.55×10 −10 Mの解離定数(K D )でVEGFに結合する、及び
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.32×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くても0.245×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する、
(g)Abeta及びPGE2、前記結合タンパク質は、
直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも1.21×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くとも0.049×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する、
又は、
(h)IL−15及びPGE2、前記結合タンパク質は、
(1)表面プラズモン共鳴により測定されたとき、多くとも4.89×10 −9 Mの解離定数(K D )でIL−15に結合する、及び、
(2)直接結合ELISAにより測定されたとき、多くとも 1.54×10 −9 MのEC 50 でPGE2を阻害する、及び/又は、PGE2中和アッセイにより測定されたとき、多くても0.048×10 −9 MのEC 50 でPGE2を中和する。 - 下記に結合することができる、請求項1〜3の何れか1項に記載の結合タンパク質。
(a)TNF及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号114及び115、
配列番号116及び117、
配列番号118及び119、又は
配列番号120及び121
で表されるアミノ酸配列を含む、
(b)NGF及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号132及び133、又は
配列番号134及び135
で表されるアミノ酸配列を含む、
(c)IL−17A及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号136及び137、又は
配列番号138及び139
で表されるアミノ酸配列を含む、
(d)IL−1b及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号140及び141、又は
配列番号142及び143
で表されるアミノ酸配列を含む、
(e)IL−6R及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号144及び145、又は
配列番号146及び147
で表されるアミノ酸配列を含む、
(f)VEGF及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号128及び129、又は
配列番号130及び131
で表されるアミノ酸配列を含む、
(g)Abeta及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号148及び149、又は
配列番号150及び151
で表されるアミノ酸配列を含む、又は
(h)IL−15及びPGE2、ここで、前記結合タンパク質は、
配列番号164及び165、又は
配列番号166及び167
で表されるアミノ酸配列を含む。 - (a)X1は、CH1又はCLではない、
(b)X1は、配列番号1〜27の何れかに記載されるアミノ酸配列を含む、
(c)結合タンパク質は、結晶化されたタンパク質である、
(d)Fc領域は、天然配列のFc領域又はバリアント配列のFc領域である、及び/又は、
(e)Fc領域は、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgM、IgE又はIgDに由来するFc領域である、
請求項1〜3の何れか1項に記載の結合タンパク質。 - 2つの第一のポリペプチド鎖及び2つの第二のポリペプチド鎖を含み、4つの機能的標的結合部位を形成する、請求項1〜5の何れか1項に記載の結合タンパク質。
- 第一のポリペプチド鎖及び第二のポリペプチド鎖を含む、請求項1〜6の何れか1項に記載の結合タンパク質であって、
第一のポリペプチド鎖は、第一のVD1−(Xl)n−VD2−C−(X2)n(ここで、
VD1は第一の重鎖可変ドメインであり、
VD2は第二の重鎖可変ドメインであり、
Cは重鎖定常ドメインであり、
X1はリンカーであり、
X2はFc領域であり、
nは0又は1である。)
を含み、
第二のポリペプチド鎖は、第一のVD1−(Xl)n−VD2−C−(X2)n(ここで、
VD1は第一の軽鎖可変ドメインであり、
VD2は第二の軽鎖可変ドメインであり、
Cは軽鎖定常ドメインであり、
X1はリンカーであり、
X2はFc領域であり、
nは、(X1)nについては0又は1であり、(X2)nについては0である。)
を含む、結合タンパク質。 - 請求項1〜7の何れか1項に記載の結合タンパク質と、免疫接着分子、造影剤、治療剤及び細胞毒性剤からなる群から選択される薬剤とを含む結合タンパク質連結体であって、
(a)造影剤は、放射性標識、酵素、蛍光標識、発光標識、生物発光標識、磁気標識およびビオチンからなる群から選択され、放射性標識は、 3 H、 14 C、 35 S、 90 Y、 99 Tc、 111 In、 125 I、 131 I、 177 Lu、 166 Hoおよび 153 Smからなる群から選択される、又は、
(b)治療剤または細胞毒性剤は、代謝抑制剤、アルキル化剤、抗生物質、増殖因子、サイトカイン、抗血管新生剤、抗有糸分裂剤、アントラサイクリン、トキシンおよびアポトーシス剤からなる群から選択される
結合タンパク質。 - 請求項1〜7のいずれか一項に記載の結合タンパク質アミノ酸配列をコードする単離された核酸。
- 請求項9に記載の単離された核酸を含むベクターであって、pcDNA(商標)、pTT、pTT3、pEFBOS、pBV、pJV、pcDNA3.1TOPO(商標)、pEF6TOPO(商標)およびpBJからなる群から選択される、ベクター。
- 原核細胞、大腸菌細胞、真核細胞、原生生物細胞、動物細胞、植物細胞、真菌細胞、哺乳動物細胞、鳥類細胞、昆虫細胞、CHO細胞、COS細胞、酵母細胞、サッカロミセス・セレビシアエ(Saccharomyces cerevisiae)又は昆虫Sf9細胞である、請求項10のベクターを含む宿主細胞。
- 結合タンパク質を産生するのに十分な条件下で、請求項11に記載の宿主細胞を培養培地中において培養することを含む、結合タンパク質を生産する方法。
- 請求項1〜7のいずれか1項に記載の結合タンパク質又は請求項8に記載の結合タンパク質連結体、及び医薬として許容される担体を含む医薬組成物であって、前記医薬組成物は、少なくとも1つの追加の治療剤をさらに含み、前記追加の治療剤は、治療剤、造影剤、細胞毒性剤、血管新生阻害剤;キナーゼ阻害剤;共刺激分子遮断剤;接着分子遮断剤;抗サイトカイン抗体またはその機能的断片;メトトレキサート;シクロスポリン;ラパマイシン;FK506;検出可能な標識またはレポーター;TNFアンタゴニスト;抗リウマチ薬;筋肉弛緩剤、麻酔薬、非ステロイド系抗炎症薬(NSAID)、鎮痛剤、麻酔、鎮静剤、局所麻酔、神経筋肉遮断剤、抗微生物剤、抗乾癬剤、コルチコステロイド、アナボリックステロイド、エリスロポエチン、免疫化、イムノグロブリン、免疫抑制剤、成長ホルモン、ホルモン置換薬、放射性医薬、抗うつ剤、抗精神病薬、刺激物質、喘息薬、βアゴニスト、吸入用ステロイド、エピネフリンまたは類似体、サイトカインおよびサイトカインアンタゴニストからなる群から選択される、医薬組成物。
- 関節リウマチ、骨関節炎、若年性慢性関節炎、化膿性関節炎、ライム関節炎、乾癬性関節炎、反応性関節炎、脊椎関節症、全身性紅斑性狼瘡、クローン病、潰瘍性大腸炎、炎症性腸疾患、インシュリン依存性糖尿病、甲状腺炎、喘息、アレルギー性疾患、乾癬、皮膚炎、強皮症、移植片対宿主病、臓器移植拒絶、臓器移植に関連する急性または慢性免疫疾患、サルコイドーシス、アテローム性動脈硬化症、播種性血管内凝固、川崎病、バセドウ病、ネフローゼ症候群、慢性疲労症候群、ウェゲナー肉芽腫症、ヘノッホ・シェーライン紫斑症、腎臓の顕微鏡的血管炎、慢性活動性肝炎、ブドウ膜炎、敗血症性ショック、毒素性ショック症候群、敗血症症候群、悪液質、感染性疾患、寄生性疾患、後天性免疫不全症候群、急性横断性脊髄炎、ハンチントン舞踏病、パーキンソン病、アルツハイマー病、発作、原発性胆汁性肝硬変、溶血性貧血、悪性腫瘍、心不全、心筋梗塞、アジソン病、孤発性の、多内分泌腺機能低下症候群I型および多内分泌腺機能低下症候群II型、シュミット症候群、成人(急性)呼吸促迫症候群、脱毛症、円形脱毛症、血清反応陰性関節炎、関節炎、ライター病、乾癬性関節炎、潰瘍性大腸性関節炎、腸疾患性滑膜炎、クラミジア、エルシニアおよびサルモネラ関連関節炎、脊椎関節症、アテローム性疾患/アテローム性動脈硬化症、アトピー性アレルギー、自己免疫性水疱性疾患、尋常性天疱瘡、落葉状天疱瘡、類天疱瘡、線状IgA病、自己免疫性溶血性貧血、クームス陽性溶血性貧血、後天性悪性貧血、若年性悪性貧血、筋痛性脳脊髄炎/ロイヤルフリー病、慢性粘膜皮膚カンジダ症、巨細胞性動脈炎、原発性硬化性肝炎、突発性自己免疫性肝炎、後天性免疫不全症候群、後天性免疫不全関連疾患、B型肝炎、C型肝炎、分類不能型免疫不全症(分類不能型原発性低γグロブリン血症)、拡張型心筋症、女性不妊症、卵巣機能不全、早期卵巣機能不全、繊維性肺疾患、突発性間質性肺炎、炎症後間質性肺疾患、間質性肺炎、結合組織疾患関連間質性肺疾患、混合性結合組織疾患関連肺疾患、全身性硬化症関連間質性肺疾患、関節リウマチ関連間質性肺疾患、全身性紅斑性狼瘡関連肺疾患、皮膚筋炎/多発性筋炎関連肺疾患、シェーグレン病関連肺疾患、強直性脊椎炎関連肺疾患、血管炎性びまん性肺疾患(vasculitic diffuse lung disease)、ヘモシデローシス関連肺疾患、薬物によって誘導された間質性肺疾患、繊維症、放射性繊維症、閉塞性細気管支炎、慢性好酸球性肺炎、リンパ球浸潤性肺疾患、感染後間質性肺疾患、通風関節炎、自己免疫性肝炎、1型自己免疫性肝炎(古典的自己免疫性またはルポイド肝炎)、2型自己免疫性肝炎(抗LKM抗体肝炎)、自己免疫媒介性低血糖症、黒色表皮腫を伴うB型インシュリン抵抗性、副甲状腺機能低下症、臓器移植に関連する急性免疫疾患、臓器移植に関連する慢性免疫疾患、変形性関節症、原発性硬化性胆管炎、1型乾癬、2型乾癬、特発性白血球減少症、自己免疫性好中球減少症、腎臓病NOS、糸球体腎炎、腎臓の顕微鏡的血管炎、ライム病、円板状紅斑性狼瘡、男性不妊症特発性またはNOS、精子自己免疫、多発性硬化症(すべてのサブタイプ)、交感性眼炎、結合組織疾患に続発する肺高血圧症、グッドパスチャー症候群、結節性多発動脈炎の肺症状、急性リウマチ熱、リウマチ性脊椎炎、スチル病、全身性硬化症、シェーグレン症候群、高安病/動脈炎、自己免疫性血小板減少症、特発性血小板減少症、自己免疫性甲状腺疾患、甲状腺機能亢進症、甲状腺腫自己免疫性甲状腺機能低下症(橋本病)、萎縮性自己免疫性甲状腺機能低下症、原発性粘液水腫(primary myxoedema)、水晶体起因性ブドウ膜炎、原発性血管炎、白斑急性肝疾患、慢性肝疾患、アルコール性肝硬変、アルコール誘発性肝障害、胆汁うっ滞(choleosatatis)、特異体質性肝疾患、薬物誘発性肝炎、非アルコール性脂肪性肝炎、アレルギーおよび喘息、B群連鎖球菌(GBS)感染、精神障害(例えば、うつ病および統合失調症)、Th2型およびTh1型によって媒介される疾病、急性および慢性疼痛(疼痛の様々な形態)、ならびに、肺癌、乳癌、胃癌、膀胱癌、大腸癌、膵臓癌、卵巣癌、前立腺癌および腎臓癌および造血性悪性病変(白血病およびリンパ腫)などの癌、無βリポタンパク質血症、先端チアノーゼ、急性および慢性寄生性または感染性プロセス、急性白血病、急性リンパ芽球性白血病(ALL)、急性骨髄性白血病(AML)、急性または慢性細菌感染、急性膵炎、急性腎不全、腺癌、心房(aerial)異所性拍動、AIDS認知症複合、アルコール誘発性肝炎、アレルギー性結膜炎、アレルギー性接触性皮膚炎、アレルギー性鼻炎、同種移植拒絶、α−1−アンチトリプシン欠乏症、筋萎縮性側索硬化症、貧血、狭心症、前角細胞変性、抗cd3治療、抗リン脂質症候群、抗受容体過敏症反応(anti−receptor hypersensitivity reactions)、大動脈(aordic)および動脈瘤、大動脈解離、動脈性高血圧、動脈硬化症、動静脈痩、運動失調、心房細動(持続的または発作性)、心房粗動、房室ブロック、B細胞リンパ腫、骨移植拒絶、骨髄移植(BMT)拒絶、脚ブロック、バーキットリンパ腫、火傷、心不整脈、心機能不全症候群(cardiac stun syndrome)、心臓腫瘍、心筋症、心肺バイパス炎症反応、軟骨移植拒絶、小脳皮質変性、小脳疾患、無秩序なまたは多巣性心房頻脈、化学療法関連疾患、慢性骨髄性白血病(CML)、慢性アルコール症、慢性炎症性病変、慢性リンパ性白血病(CLL)、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、慢性サリチル酸中毒、結腸直腸癌、うっ血性心不全、結膜炎、接触性皮膚炎、肺性心、冠動脈疾患、クロイツフェルト−ヤコブ病、培養陰性敗血症、嚢胞性繊維症、サイトカイン療法関連疾患、ボクサー脳、脱髄性疾患、デング出血熱、皮膚炎、皮膚科学的症状、糖尿病、真性糖尿病、糖尿病性動脈硬化疾患、瀰漫性レビー小体病、拡張型うっ血性心筋症、大脳基底核の疾患、中年のダウン症候群、中枢神経ドーパミン受容体を遮断する薬物によって誘発された薬物誘発性運動疾患、薬物感受性、湿疹、脳脊髄炎、心内膜炎、内分泌疾患、喉頭蓋炎、エプスタイン−バーウイルス感染、紅痛症、垂体外路および小脳疾患、家族性血球貪食性リンパ組織球症(familial hematophagocytic lymphohistiocytosis)、致死的胸腺移植組織拒絶、フリードライヒ失調症、機能的末梢動脈疾患、真菌性敗血症、ガス壊疸、胃潰瘍、糸球体腎炎、いずれかの臓器または組織の移植片拒絶、グラム陰性敗血症、グラム陽性敗血症、細胞内生物に起因する肉芽腫、有毛細胞白血病、ハラーホルデン・スパッツ病、橋本甲状腺炎、枯草熱、心臓移植拒絶、血色素症、血液透析、溶血性尿毒症症候群/血栓溶解血小板減少紫斑病、出血、肝炎(A型)、ヒス束不整脈、HIV感染/HIV神経障害、ホジキン病、運動過剰疾患、過敏症反応、過敏性肺炎、高血圧、運動低下疾患、視床下部−下垂体−副腎皮質系評価、特発性アジソン病、特発性肺繊維症、抗体媒介性細胞毒性、無力症、乳児脊髄性筋萎縮症、大動脈の炎症、A型インフルエンザ、電離放射線曝露、虹彩毛様体炎/ブドウ膜炎/視神経炎、虚血再灌流障害、虚血性発作、若年性関節リウマチ、若年性脊髄性筋萎縮症、カポジ肉腫、腎移植拒絶、レジオネラ、リーシュマニア症、ハンセン病、皮質脊髄系の病変、脂肪血症(lipedema)、肝臓移植拒絶、リンパ浮腫(lymphederma)、マラリア、悪性リンパ腫、悪性組織球増殖症、悪性黒色腫、髄膜炎、髄膜炎菌血症(meningococcemia)、代謝性/特発性、偏頭痛、ミトコンドリア多系疾患(mitochondrial multi.system disorder)、混合性結合組織病、モノクローナル高ガンマグロブリン血症、多発性骨髄腫、多系統変性(メンセル・デジェリーヌ−トーマス・シャイ−ドレーガーおよびマシャド−ジョセフ)、重症筋無力症、マイコバクテリウム・アビウム・イントラセルラーレ、マイコバクテリウム・チュバキュロシス、骨髄形成異常、心筋梗塞、真菌虚血疾患、上咽頭癌、新生児慢性肺疾患、腎炎、ネフローゼ、神経変性疾患、神経原性I筋萎縮、好中球減少性発熱、非ホジキンリンパ腫、腹部大動脈およびその分枝の閉塞、閉塞性動脈疾患、okt3療法、精巣炎/精巣上体炎、精巣炎/精管復元術処置、臓器肥大、骨粗鬆症、膵臓移植拒絶、膵癌、腫瘍随伴性症候群/悪性腫瘍の高カルシウム血症、副甲状腺移植拒絶、骨盤内炎症性疾患、通年性鼻炎、心膜疾患、末梢アテローム硬化性疾患、末梢血管疾患、腹膜炎、悪性貧血、ニューモシスチス・カリニ肺炎、肺炎、POEMS症候群(多発神経炎、臓器肥大、内分泌疾患、単クローン性γグロブリン血症および皮膚変化症候群(skin changes syndrome))、灌流後症候群(post perfusion syndrome)、ポンプ後症候群(post pump syndrome)、心筋梗塞後開心術症候群、子癇前症、進行性核上性麻痺、原発性肺高血圧、放射線療法、レイノー現象および病、レイノー病、レフサム病、規則的なQRS幅の狭い頻脈症(regular narrow QRS tachycardia)、腎血管性高血圧、再灌流障害、拘束型心筋症、肉腫、強皮症、老年性舞踏病、レビー小体型の老年性認知症、血清反応陰性関節炎、ショック、鎌形赤血球貧血症、皮膚同種異系移植拒絶、皮膚変化症候群、小腸移植拒絶、固形腫瘍、固有不整脈(specific arrythmias)、脊髄性運動失調、脊髄小脳変性、連鎖球菌性筋炎、小脳の構造的病変、亜急性硬化性全脳炎、湿疹、心血管系の梅毒、全身性アナフィラキシー、全身性炎症反応症候群、全身性発症若年性関節リウマチ、T細胞またはFABALL、毛細血管拡張症、閉塞性血栓血管炎、血小板減少症、毒性、移植、外傷/出血、III型過敏症反応、IV型過敏症、不安定狭心症、尿毒症、尿路性敗血症、じんましん、心臓弁膜症、静脈瘤、血管炎、静脈疾患、静脈血栓症、心室細動、ウイルスおよび真菌感染、ウイルス性脳炎(vital encephalitis)/無菌性髄膜炎、ウイルス関連血球貪食症候群、ウェルニッケ−コルサコフ症候群、ウィルソン病、いずれかの臓器または組織の異種移植拒絶、急性冠症候群、急性特発性多発性神経炎、急性炎症性脱髄性多発神経根神経障害、急性虚血、成人スチル病、円形脱毛症、アナフィラキシー、抗リン脂質抗体症候群、再生不良性貧血、アテローム性動脈硬化症、アトピー性湿疹、アトピー性皮膚炎、自己免疫性皮膚炎、連鎖球菌感染に伴う自己免疫異常、自己免疫性腸症、自己免疫性難聴、自己免疫性リンパ増殖症候群(ALPS)、自己免疫性心筋炎、自己免疫性早期卵巣不全、眼瞼炎、気管支拡張症、水疱性類天疱瘡、心血管疾患、劇症型抗リン脂質症候群、セリアック病、頚部脊椎症、慢性虚血、瘢痕性類天疱瘡、多発性硬化症のリスクを有する臨床的孤発症候群(cis)、結膜炎、小児発症精神障害、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、涙嚢炎、皮膚筋炎、糖尿病性網膜症、真性糖尿病、椎間板ヘルニア、椎間板脱出、薬物誘発免疫性溶血性貧血、心内膜炎、子宮内膜症、眼内炎、上強膜炎、多形性紅斑、重症型多形性紅斑、妊娠性類天疱瘡、ギラン・バレー症候群(GBS)、枯草熱、ヒューズ症候群、特発性パーキンソン病、特発性間質性肺炎、IgE媒介性アレルギー、免疫性溶血性貧血、封入体筋炎、感染性眼炎症疾患、炎症性脱髄疾患、炎症性心疾患、炎症性腎疾患、IPF/UIP、虹彩炎、角膜炎、乾性角結膜炎(keratojuntivitis sicca)、クスマウル病またはクスマウル−マイヤー病、ランドリー麻痺、ランゲルハンス細胞性組織球症、網状皮斑、黄斑変性、顕微鏡的多発性血管炎、モルブス・ベヒテレフ(morbus bechterev)、運動ニューロン疾患、粘膜性類天疱瘡、多臓器不全、重症筋無力症、骨髄異形成症候群、心筋炎、神経根障害、神経障害、非A非B型肝炎、視神経炎、骨溶解、卵巣癌、小関節性JRA、末梢動脈閉塞疾患(PA
OD)、末梢血管疾患(PVD)、末梢動脈疾患(PAD)、静脈炎、結節性多発性動脈炎(または結節性動脈周囲炎)、多発性軟骨炎、リウマチ性多発性筋痛、白毛症、多関節性JRA、多内分泌欠損症候群、多発性筋炎、リウマチ性多発性筋痛(PMR)、ポンプ後症候群、原発性パーキンソニズム、前立腺癌および直腸癌および造血性悪性病変(白血病およびリンパ腫)、前立腺炎、赤芽球癆、原発性副腎不全、再発性視神経脊髄炎、再狭窄、リウマチ性心疾患、sapho(滑膜炎、アクネ、膿疱症、骨過形成および骨髄炎)、強皮症、続発性アミロイドーシス、ショック肺、強膜炎、坐骨神経痛、二次性副腎不全、シリコーン関連結合組織病、スネドン−ウィルキンソン皮膚症、強直性脊椎炎、スティーブンス・ジョンソン症候群(SJS)、全身性炎症反応症候群、側頭動脈炎、トキソプラスマ性網膜炎、中毒性表皮剥離症、横断性脊髄炎、TRAPS(腫瘍壊死因子受容体)、1型アレルギー反応、II型糖尿病、じんましん、通常型間質性肺炎(UIP)、血管炎、春季結膜炎、ウイルス性網膜炎、フォークト・小柳・原田症候群(VKH症候群)、滲出型黄斑変性、創傷治癒、エルシニアおよびサルモネラ関連間接症を含む群から選択される疾患又は疾病を治療するために対象に投与される、請求項13に記載の医薬組成物。 - 非経口、皮下、筋肉内、静脈内、関節内、気管支内、腹腔内、嚢内、軟骨内、腔内(intracavity)、腔内(intracelial)、小脳内、脳室内、結腸内、頸管内、胃内、肝臓内、心筋内、骨内、骨盤内、心臓周囲内、腹腔内、胸膜内、前立腺内、肺内、結腸内、腎臓内、網膜内、脊髄内、滑膜内、胸腔内、子宮内、膀胱内、ボーラス、膣、直腸、口内、舌下、鼻内および経皮から選択される少なくとも1つの様式により対象に投与される、請求項13に記載の医薬組成物。
- イムノアッセイにより、試験サンプル中の少なくとも一の標的又はその断片の存在、量又は濃度を決定するための方法であって、イムノアッセイは、少なくとも一の結合タンパク質及び少なくとも一の検出可能な標識に、試験サンプルを接触させることを含み、前記少なくとも一の結合タンパク質は、請求項1〜7の何れか1項に記載の結合タンパク質を含む、方法。
- (a)試験サンプルを少なくとも一の結合タンパク質に接触させる工程と、ここで、結合タンパク質は、標的又はその断片のエピトープに結合して、第一の複合体を形成し、
(b)前記複合体を含む試験サンプルを、少なくとも一の検出可能な標識に接触させる工程と、ここで、検出可能な標識は、結合タンパク質に結合していない前記標的若しくはその断片のエピトープ又は結合タンパク質に結合して、第二の複合体を形成し、
(c)第二の複合体中の検出可能な標識により生じたシグナルに基づいて、試験サンプル中の標的又はその断片の存在、量又は濃度を検出する工程と、ここで、標的又はその断片の存在、量又は濃度は、検出可能な標識により生じるシグナルに直接的に相関する、
をさらに含む、請求項16に記載の方法。 - (a)試験サンプルを少なくとも一の結合タンパク質に接触させる工程と、ここで、結合タンパク質は標的又はその断片のエピトープに結合して、第一の複合体を形成する、
(b)前記複合体を含む試験サンプルを、少なくとも一の検出可能な標識に接触させる工程と、ここで、検出可能な標識は、結合タンパク質との結合に関して標的又はその断片と競合して第二の複合体を形成し、
(c)第二の複合体における検出可能な標識により生じたシグナルに基づいて、試験サンプル中の標的又はその断片の存在、量又は濃度を検出する工程と、ここで、標的又はその断片の存在、量又は濃度は、検出可能な標識により生じたシグナルに非直接的に相関する、
をさらに含む、請求項16に記載の方法。 - 標的又はその断片の存在、量又は濃度について試験サンプルをアッセイするためのキットであって、
(a)標的又はその断片について試験サンプルをアッセイするための説明書と、
(b)請求項1〜7の何れか1項に記載の結合タンパク質を含む少なくとも一の結合タンパク質と
を含む、キット。
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