WO2015060391A1 - 目的物質の製造法 - Google Patents

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和輝 山田
吉彦 原
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味の素株式会社
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    • C12Y102/01026—2,5-Dioxovalerate dehydrogenase (1.2.1.26)
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    • C12Y207/01—Phosphotransferases with an alcohol group as acceptor (2.7.1)
    • C12Y207/01017—Xylulokinase (2.7.1.17)
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    • C12Y402/00—Carbon-oxygen lyases (4.2)
    • C12Y402/01—Hydro-lyases (4.2.1)
    • C12Y402/01082—Xylonate dehydratase (4.2.1.82)
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Y—ENZYMES
    • C12Y503/00—Intramolecular oxidoreductases (5.3)
    • C12Y503/01—Intramolecular oxidoreductases (5.3) interconverting aldoses and ketoses (5.3.1)
    • C12Y503/01005—Xylose isomerase (5.3.1.5)

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a target substance such as L-amino acid using coryneform bacteria.
  • L-amino acids are industrially useful as additives for animal feed, ingredients for seasonings and foods and drinks, amino acid infusions, and the like.
  • L-amino acids are industrially produced, for example, by fermentation using various microorganisms capable of producing L-amino acids.
  • methods for producing L-amino acids by fermentation include a method using a wild-type microorganism (wild strain), a method using an auxotrophic strain derived from a wild strain, and various drug-resistant mutant strains derived from a wild strain. And a method using a strain having characteristics of both an auxotrophic strain and a metabolic control mutant.
  • microorganisms whose L-amino acid producing ability has been improved by recombinant DNA technology have been used for the production of L-amino acids.
  • Examples of a method for improving the L-amino acid producing ability of a microorganism include, for example, enhancing the expression of a gene encoding an L-amino acid biosynthetic enzyme (Patent Documents 1 and 2) or an L-amino acid biosynthetic system. To enhance the inflow of the carbon source (Patent Document 3).
  • edible part raw materials such as starch and fats are mainly used as such biomass raw materials, but in the future, use of non-edible part raw materials such as cellulose, hemicellulose, and lignin is desired.
  • Cellulose and hemicellulose are converted into pentose and hexose through a pretreatment process using heat, acid, etc., and a saccharification process using an enzyme such as cellulase, and can be used as a raw material for fermentation (patent) References 4, 5).
  • Escherichia coli preferentially assimilate glucose when such a mixed sugar of pentose and hexose is used as a raw material for amino acid fermentation and the like, and as a result, two-stage growth (dioxy-) ) Or a phenomenon in which growth is delayed (Non-Patent Documents 1 and 2).
  • NCgl2954 gene of Corynebacterium glutamicum is a gene encoding a transcription factor. An association between the NCgl2954 gene and xylose utilization has not been reported.
  • An object of the present invention is to develop a novel technique for improving the ability to assimilate xylose in coryneform bacteria and to provide a method for efficiently producing a target substance such as L-amino acid and nucleic acid from a raw material containing xylose. To do.
  • coryneform bacteria having mutations introduced into the NCgl2954 gene and coryneform bacteria lacking the NCgl2954 gene can efficiently assimilate xylose.
  • the present invention was completed.
  • the present invention can be exemplified as follows.
  • a method for producing a target substance comprising culturing a coryneform bacterium having the ability to produce a target substance in a medium containing xylose, generating and accumulating the target substance in the medium, and collecting the target substance from the medium Because A method wherein xylose utilization is improved by introducing a mutation into the coding region and / or expression control region of the NCgl2954 gene on the chromosome of the bacterium. [2] The method as described above, wherein the improvement in xylose utilization is due to the improvement in xylose uptake ability.
  • the mutation is one or more mutations selected from the following mutations (1) to (7): (1) a mutation in which an amino acid residue corresponding to the proline residue at position 483 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an amino acid residue other than proline; (2) a mutation in which the amino acid residue corresponding to the cysteine residue at position 334 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an amino acid residue other than cysteine; (3) a mutation in which the amino acid residue corresponding to the tyrosine residue at position 377 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an amino acid residue other than tyrosine; (4) a mutation in which the amino acid residue corresponding to the leucine residue at position 365 in SEQ ID NO: 14 is substituted with an amino acid residue other than leucine; (5) a mutation in which an amino acid residue corresponding to the leucine residue at position 366 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an amino acid residue other than leucine; (6) A mutation in which an amino acid residues selected from the following mutation
  • the method wherein the mutations (1) to (6) are the mutations (1a) to (6a) below, respectively: (1a) a mutation in which the amino acid residue corresponding to the proline residue at position 483 of SEQ ID NO: 14 is substituted with a leucine residue; (2a) a mutation in which an amino acid residue corresponding to the cysteine residue at position 334 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an arginine residue; (3a) a mutation in which an amino acid residue corresponding to the tyrosine residue at position 377 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an asparagine residue; (4a) a mutation in which an amino acid residue corresponding to the leucine residue at position 365 in SEQ ID NO: 14 is substituted with a serine residue; (5a) a mutation in which an amino acid residue corresponding to the leucine residue at position 366 of SEQ ID NO: 14 is substituted with an arginine residue; (6a) A mutation in which the amino acid residue corresponding to the amino acid residue
  • xylose isomerase is a protein according to the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11; (B) a protein having an amino acid sequence including substitution, deletion, insertion, or addition of one or several amino acid residues and having xylose isomerase activity in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11; (C) A protein comprising an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 11, and having xylose isomerase activity.
  • the xylulokinase is a protein described in the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12; (B) a protein having an amino acid sequence including substitution, deletion, insertion or addition of one or several amino acid residues in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12 and having xylulokinase activity; (C) A protein comprising an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 12 and having xylulokinase activity.
  • the bacterium is further one or more selected from the group consisting of xylose dehydrogenase, xylonolactonase, xylonic acid dehydratase, 2-keto-3-deoxyxylonic acid dehydratase, and ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase. Said method, modified to increase the activity of the enzyme.
  • the xylonic acid dehydratase, 2-keto-3-deoxyxylonic acid dehydratase, and ⁇ -ketoglutaric acid semialdehyde dehydrogenase are proteins derived from Escherichia bacteria, Sphingomonas bacteria, and Bacillus bacteria, respectively. Method.
  • the xylose dehydrogenase is a protein according to the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 16 or 42; (B) a protein having an amino acid sequence including substitution, deletion, insertion or addition of one or several amino acid residues and having xylose dehydrogenase activity in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 16 or 42; (C) A protein comprising an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 16 or 42 and having xylose dehydrogenase activity.
  • the xylonolactonase is a protein described in the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 18 or 44; (B) a protein having an amino acid sequence including substitution, deletion, insertion, or addition of one or several amino acid residues and having xylonolactonase activity in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 18 or 44; (C) A protein comprising an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 18 or 44, and having xylonolactonase activity.
  • the xylonic acid dehydratase is a protein described in the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20 or 46; (B) a protein having an amino acid sequence including substitution, deletion, insertion or addition of one or several amino acid residues and having xylonic acid dehydratase activity in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20 or 46; (C) A protein having an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20 or 46 and having xylonic acid dehydratase activity.
  • the 2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase is a protein described in the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 22 or 38; (B) the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 22 or 38, having an amino acid sequence containing substitution, deletion, insertion, or addition of one or several amino acid residues, and 2-keto-3-deoxyxylone A protein having acid dehydratase activity; (C) a protein comprising an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 22 or 38 and having 2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase activity.
  • ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase is the protein described in the following (A), (B), or (C): (A) a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 24 or 40; (B) an amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 24 or 40, having an amino acid sequence including substitution, deletion, insertion, or addition of one or several amino acid residues, and having an ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase activity A protein having; (C) A protein comprising an amino acid sequence having 90% or more identity to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 24 or 40, and having ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase activity.
  • the target substance is a substance selected from the group consisting of amino acids, nucleic acids, and peptides.
  • the target substance is an amino acid selected from the group consisting of L-glutamic acid, L-glutamine, L-arginine, and L-lysine.
  • the target substance is a purine nucleoside selected from the group consisting of inosine, xanthosine, guanosine, and adenosine.
  • the target substance is a purine nucleotide selected from the group consisting of inosinic acid, xanthylic acid, and guanylic acid.
  • the method, wherein the bacterium is a genus Corynebacterium.
  • the method, wherein the bacterium is Corynebacterium glutamicum.
  • glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB strain The figure which shows the result of glutamic acid fermentation in a xylose culture medium.
  • A Turbidity of culture solution (OD620),
  • B Xylose concentration in culture supernatant,
  • C Glutamate concentration in culture supernatant.
  • WT C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB strain
  • ⁇ NCgl2954 C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB strain.
  • the figure which shows the result of glutamic acid fermentation in a glucose / xylose culture medium (A) Turbidity of culture solution (OD620), (B) Glucose concentration in culture supernatant, (C) Xylose concentration in culture supernatant, (D) Glutamate concentration in culture supernatant.
  • WT C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB strain
  • ⁇ NCgl2954 C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB strain.
  • the figure which shows the result of glutamic acid fermentation in a xylose culture medium (A) Turbidity of culture solution (OD620), (B) Glucose concentration in culture supernatant, (C) Xylose concentration in culture supernatant, (D) Glutamate concentration in culture supernatant.
  • WT C. glutamicum ATCC13869 / p
  • A Turbidity of culture solution (OD620), (B) Xylose concentration in culture supernatant, (C) Glutamate concentration in culture supernatant.
  • WT C. glutamicum ATCC13869 + D / pVK9Peftu_NXA strain
  • ⁇ NCgl2954 C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 + D / pVK9Peftu_NXA strain.
  • the method of the present invention comprises culturing a coryneform bacterium having the ability to produce a target substance in a medium containing xylose, and generating and accumulating the target substance in the medium or inside the bacterium, and the medium or the microbial body.
  • a method for producing an L-amino acid comprising collecting a target substance, wherein the bacterium has improved xylose utilization by introducing a mutation into the NCgl2954 gene. .
  • the bacterium used in this method is also referred to as “the bacterium of the present invention”.
  • the bacterium of the present invention is a coryneform bacterium having the ability to produce a target substance, and has improved xylose utilization by introducing a mutation into the NCgl2954 gene.
  • bacteria having target substance-producing ability refers to a medium that can produce and recover a target substance when cultured in a medium. Bacteria that have the ability to accumulate in or inside cells.
  • the bacterium having the ability to produce the target substance may be a bacterium that can accumulate a larger amount of the target substance in the medium than the unmodified strain. Non-modified strains include wild strains and parent strains. Further, the bacterium having the ability to produce the target substance may be a bacterium that can accumulate the target substance in an amount of preferably 0.5 g / L or more, more preferably 1.0 g / L or more.
  • the target substance is not particularly limited as long as it can be produced by a fermentation method using coryneform bacteria.
  • the target substance include L-amino acids, nucleic acids, and proteins.
  • the target substance also include ⁇ -ketoglutaric acid and its derivatives.
  • the bacterium of the present invention may have the ability to produce one kind of target substance, or may have the ability to produce two or more kinds of target substances.
  • L-amino acids include basic amino acids such as L-lysine, L-ornithine, L-arginine, L-histidine, L-citrulline, L-isoleucine, L-alanine, L-valine, L-leucine, glycine, etc.
  • Aliphatic amino acids amino acids which are hydroxymonoaminocarboxylic acids such as L-threonine and L-serine, cyclic amino acids such as L-proline, aromatic amino acids such as L-phenylalanine, L-tyrosine and L-tryptophan, L- Examples thereof include sulfur-containing amino acids such as cysteine, L-cystine and L-methionine, acidic amino acids such as L-glutamic acid and L-aspartic acid, and amino acids having an amide group in the side chain such as L-glutamine and L-asparagine.
  • the bacterium of the present invention may have the ability to produce one type of L-amino acid, or may have the ability to produce two or more types of L-amino acids.
  • amino acid may mean an L-amino acid unless otherwise specified.
  • ⁇ -ketoglutaric acid and its derivatives include ⁇ -ketoglutaric acid, L-glutamic acid, L-glutamine, L-arginine, L-citrulline, L-ornithine, L-proline, ⁇ -aminobutyric acid (GABA), putrescine It is done.
  • GABA ⁇ -aminobutyric acid
  • Nucleic acids include purine substances.
  • purine substances include purine nucleosides and purine nucleotides.
  • Purine nucleosides include inosine, guanosine, xanthosine, and adenosine.
  • Purine nucleotides include 5'-phosphate esters of purine nucleosides.
  • 5'-phosphate esters of purine nucleosides include inosinic acid (inosine-5'-phosphate ester; IMP), guanylic acid (guanosine-5'-phosphate ester; GMP), xanthylic acid (xanthosine-5'- Phosphate ester; XMP), and adenylic acid (adenosine-5′-phosphate ester; AMP).
  • the bacterium of the present invention may have the ability to produce one kind of purine substance, or may have the ability to produce two or more kinds of purine substances.
  • the bacterium of the present invention may have, for example, the ability to produce one or more purine nucleosides.
  • the bacterium of the present invention may have, for example, the ability to produce one or more purine nucleotides.
  • the protein is not particularly limited as long as it can be expressed using a coryneform bacterium as a host.
  • the protein may be a protein derived from the bacterium of the present invention or a protein derived from a different species.
  • the heterologous protein may be, for example, a protein derived from a microorganism, a protein derived from a plant, a protein derived from an animal, a protein derived from a virus, It may be a protein having an artificially designed amino acid sequence.
  • the protein may be a monomeric protein or a multimer protein.
  • the protein may be a protein that is naturally secreted or a protein that is non-secreted in nature.
  • the “protein” also includes embodiments called peptides, oligopeptides or polypeptides.
  • the target substance produced may be a free form, a salt thereof, or a mixture thereof. That is, in the present invention, the term “target substance” may mean a free target substance, a salt thereof, or a mixture thereof, unless otherwise specified. Examples of the salt will be described later.
  • coryneform bacteria examples include bacteria belonging to genera such as Corynebacterium genus, Brevibacterium genus, and Microbacterium genus.
  • coryneform bacteria include the following species. Corynebacterium acetoacidophilum Corynebacterium acetoglutamicum Corynebacterium alkanolyticum Corynebacterium callunae Corynebacterium glutamicum Corynebacterium lilium Corynebacterium melassecola Corynebacterium thermoaminogenes (Corynebacterium efficiens) Corynebacterium herculis Brevibacterium divaricatum (Corynebacterium glutamicum) Brevibacterium flavum (Corynebacterium glutamicum) Brevibacterium immariophilum Brevibacterium lactofermentum (Corynebacterium glutamicum) Brevibacterium roseum Brevibacterium saccharolyticum Brevibacterium thiogenitalis Corynebacterium ammoniagenes (Corynebacterium stationis) Brevibacterium album Brevibacterium cerinum Microbacterium ammoniaphilum
  • coryneform bacteria include the following strains. Corynebacterium acetoacidophilum ATCC 13870 Corynebacterium acetoglutamicum ATCC 15806 Corynebacterium alkanolyticum ATCC 21511 Corynebacterium callunae ATCC 15991 Corynebacterium glutamicum ATCC 13020, ATCC 13032, ATCC 13060, ATCC 13869, FERM BP-734 Corynebacterium lilium ATCC 15990 Corynebacterium melassecola ATCC 17965 Corynebacterium efficiens (Corynebacterium thermoaminogenes) AJ12340 (FERM BP-1539) Corynebacterium herculis ATCC 13868 Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium divaricatum) ATCC 14020 Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) ATCC 13826, ATCC 14067, AJ124
  • corynebacteria belonging to the genus Brevibacterium has been classified as a genus of corynebacteria, but bacteria integrated into the genus corynebacteria (Int. J. Syst. Bacteriol., 41, 255 (1991)) are also available. included.
  • Corynebacterium stationis which was previously classified as Corynebacterium ammoniagenes, includes bacteria that have been reclassified as Corynebacterium stationis by 16S rRNA sequencing (Int. J Syst. Evol. Microbiol., 60, 874-879 (2010)).
  • strains can be sold, for example, from the American Type Culture Collection (address 12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20852 P.O. Box 1549, Manassas, VA 20108, United States States of America). That is, a registration number corresponding to each strain is given, and it is possible to receive a sale using this registration number (see http://www.atcc.org/). The registration number corresponding to each strain is described in the catalog of American Type Culture Collection.
  • the bacterium of the present invention may be inherently capable of producing a target substance, or may be modified so as to have the ability to produce a target substance.
  • a bacterium having the ability to produce a target substance can be obtained, for example, by imparting the ability to produce a target substance to the bacterium as described above, or by enhancing the ability to produce the target substance of the bacterium as described above. .
  • L-Amino Acid-Producing Bacteria can be imparted or enhanced by a method conventionally employed for breeding amino acid-producing bacteria such as coryneform bacteria or Escherichia bacteria. (See Amino Acid Fermentation, Academic Publishing Center, May 30, 1986, first edition, pages 77-100). Examples of such methods include acquisition of auxotrophic mutants, acquisition of L-amino acid analog-resistant strains, acquisition of metabolic control mutants, and recombination with enhanced activity of L-amino acid biosynthetic enzymes. The creation of stocks.
  • L-amino acid-producing bacteria properties such as auxotrophy, analog resistance, and metabolic control mutation that are imparted may be single, or two or more.
  • L-amino acid biosynthetic enzymes whose activities are enhanced in breeding L-amino acid-producing bacteria may be used alone or in combination of two or more.
  • imparting properties such as auxotrophy, analog resistance, and metabolic control mutation may be combined with enhancing the activity of biosynthetic enzymes.
  • An auxotrophic mutant, an analog resistant strain, or a metabolically controlled mutant having L-amino acid production ability is subjected to normal mutation treatment of the parent strain or wild strain, and the auxotrophic, analog It can be obtained by selecting those exhibiting resistance or metabolic control mutations and having the ability to produce L-amino acids.
  • Normal mutation treatments include X-ray and ultraviolet irradiation, N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), ethyl methane sulfonate (EMS), methyl methane sulfonate (MMS), etc. Treatment with a mutagen is included.
  • the L-amino acid-producing ability can be imparted or enhanced by enhancing the activity of an enzyme involved in the target L-amino acid biosynthesis. Enhancing enzyme activity can be performed, for example, by modifying bacteria so that expression of a gene encoding the enzyme is enhanced. Methods for enhancing gene expression are described in WO00 / 18935 pamphlet, European Patent Application Publication No. 1010755, and the like. A detailed method for enhancing the enzyme activity will be described later.
  • the L-amino acid-producing ability can be imparted or enhanced by reducing the activity of an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of the target L-amino acid to produce a compound other than the target L-amino acid. It can be carried out.
  • an enzyme that catalyzes a reaction that produces a compound other than the target L-amino acid by branching from the biosynthetic pathway of the target L-amino acid includes enzymes involved in the degradation of the target amino acid. It is. A method for reducing the enzyme activity will be described later.
  • L-amino acid-producing bacteria and methods for imparting or enhancing L-amino acid-producing ability are given below.
  • any of the modifications exemplified below for imparting or enhancing the properties of L-amino acid-producing bacteria and L-amino acid-producing ability may be used alone or in appropriate combination.
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-glutamic acid-producing ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-glutamic acid biosynthetic enzymes is increased. .
  • Such enzymes include, but are not limited to, glutamate dehydrogenase (gdhA), glutamine synthetase (glnA), glutamate synthase (gltBD), isocitrate dehydrogenase (icdA), aconite hydratase (acnA, acnB), citrate synthase (GltA), methyl citrate synthase (prpC), phosphoenolpyruvate carboxylase (ppc), pyruvate carboxylase (pyc), pyruvate dehydrogenase (aceEF, lpdA), pyruvate kinase (pykA, pykF), phosphoenolpyruvate Synthase (ppsA), enolase (eno), phosphoglyceromutase (pgmA, pgmI), phosphoglycerate kinase (pgk),
  • the parentheses are examples of abbreviations for genes encoding the enzymes (the same applies to the following description).
  • these enzymes it is preferable to enhance the activity of one or more enzymes selected from, for example, glutamate dehydrogenase, citrate synthase, phosphoenolpyruvate carboxylase, and methyl citrate synthase.
  • Examples of coryneform bacteria modified to increase the expression of glutamate synthetase gene include those disclosed in WO99 / 07853.
  • the method for imparting or enhancing the ability to produce L-glutamic acid is, for example, selected from enzymes that catalyze a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-glutamic acid to produce a compound other than L-glutamic acid.
  • a method of modifying the bacterium so that the activity of the further enzyme is reduced can also be mentioned.
  • Examples of such enzymes include, but are not limited to, isocitrate lyase (aceA), ⁇ -ketoglutarate dehydrogenase (sucA, odhA), phosphotransacetylase (pta), acetate kinase (ack), acetohydroxyacid synthase (ilvG ), Acetolactate synthase (ilvI), formate acetyltransferase (pfl), lactate dehydrogenase (ldh), alcohol dehydrogenase (adh), glutamate decarboxylase (gadAB), succinate dehydrogenase (sdhABCD), 1-pyrroline-5-carboxylate
  • An example is dehydrogenase (putA).
  • aceA isocitrate lyase
  • sucA, odhA phosphotransacetylase
  • ack acetate kinase
  • ack acetohydroxy
  • Coryneform bacteria with reduced or deficient ⁇ -ketoglutarate dehydrogenase activity and methods for obtaining them are described in WO2008 / 075483.
  • Specific examples of coryneform bacteria with reduced or deficient ⁇ -ketoglutarate dehydrogenase activity include the following strains.
  • L-glutamic acid-producing bacteria or parent strains for inducing them include strains in which both ⁇ -ketoglutarate dehydrogenase (sucA) activity and succinate dehydrogenase (sdh) activity are reduced or deficient (JP 2010) -041920).
  • specific examples of such strains include, for example, an odhAsdhA double-deficient strain of Corynebacterium glutamicum ATCC14067 (Corynebacterium glutamicum 8L3G ⁇ SDH strain) (Japanese Patent Laid-Open No. 2010-041920).
  • a bacterium is modified so that the activity of D-xylulose-5-phosphate-phosphoketolase and / or fructose-6-phosphate phosphoketolase is increased.
  • There is also a method to do (Special Table 2008-509661). Either one or both of D-xylulose-5-phosphate-phosphoketolase activity and fructose-6-phosphate phosphoketolase activity may be enhanced.
  • D-xylulose-5-phosphate phosphoketolase and fructose-6-phosphate phosphoketolase may be collectively referred to as phosphoketolase.
  • D-xylulose-5-phosphate-phosphoketolase activity is the consumption of phosphoric acid to convert xylulose-5-phosphate into glyceraldehyde-3-phosphate and acetyl phosphate, and one molecule of H 2 O Means the activity of releasing. This activity is measured by the method described in Goldberg, M. et al. (Methods Enzymol., 9,515-520 (1966)) or L. Meile (J. Bacteriol. (2001) 183; 2929-2936). be able to.
  • fructose-6-phosphate phosphoketolase activity means that phosphoric acid is consumed, fructose 6-phosphate is converted into erythrose-4-phosphate and acetyl phosphate, and one molecule of H 2 O is released. Means activity. This activity is measured by the method described in Racker, E (Methods Enzymol., 5, 276-280 (1962)) or L. Meile (J. Bacteriol. (2001) 183; 2929-2936). be able to.
  • Examples of a method for imparting or enhancing L-glutamic acid producing ability include, for example, enhancing expression of yhfK gene (WO2005 / 085419) and ybjL gene (WO2008 / 133161) which are L-glutamic acid excretion genes. It is done.
  • Examples of methods for imparting or enhancing L-glutamic acid-producing ability for coryneform bacteria include methods for imparting resistance to organic acid analogs and respiratory inhibitors, and methods for imparting sensitivity to cell wall synthesis inhibitors. It is done. Specific examples of such a method include, for example, a method for imparting monofluoroacetic acid resistance (Japanese Patent Laid-Open No. 50-113209), a method for imparting adenine resistance or thymine resistance (Japanese Patent Laid-Open No. 57-065198), and urease.
  • JP 52-038088 Method of weakening (JP 52-038088), method of imparting malonic acid resistance (JP 52-038088), method of imparting resistance to benzopyrones or naphthoquinones (JP 56-1889), HOQNO Method for imparting resistance (Japanese Patent Laid-Open No. 56-140895), method for imparting resistance to ⁇ -ketomalonic acid (Japanese Patent Laid-Open No. 57-2689), method for imparting guanidine resistance (Japanese Patent Laid-Open No. 56-35981), sensitivity to penicillin And the like (JP-A-4-88994).
  • resistant or susceptible bacteria include the following strains: Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ3949 (FERM BP-2632; see JP 50-113209) Corynebacterium glutamicum AJ11628 (FERM P-5736; see JP-A-57-065198) Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11355 (FERM P-5007; see JP 56-1889) Corynebacterium glutamicum AJ11368 (FERM P-5020; see JP-A-56-1889) Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11217 (FERM P-4318; see JP-A-57-2689) Corynebacterium glutamicum AJ11218 (FERM P-4319; see JP 57-2689) Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11564 (FERM P-
  • Examples of a method for imparting or enhancing L-glutamic acid producing ability for coryneform bacteria include a method for enhancing expression of the yggB gene and a method for introducing a mutant yggB gene having a mutation introduced into the coding region ( WO2006 / 070944).
  • the yggB gene encodes a mechanosensitive channel.
  • the yggB gene of Corynebacterium glutamicum ATCC13032 corresponds to a complementary sequence of the sequences 1,336,091 to 1,337,692 in the genome sequence registered in the NCBI database under GenBank Accession No. NC_003450, and is also called NCgl1221.
  • the YggB protein encoded by the yggB gene of Corynebacterium glutamicum ATCC13032 is registered as GenBank accession No. NP_600492.
  • the nucleotide sequence of the yggB gene of Corynebacterium glutamicum 2256 (ATCC 13869) and the amino acid sequence of the YggB protein encoded by the same gene are shown in SEQ ID NOs: 25 and 26, respectively.
  • mutant yggB gene used herein examples include the yggB gene having the following mutations.
  • the YggB protein encoded by the mutant yggB gene is also referred to as a mutant YggB protein.
  • the yggB gene not having the mutation and the YggB protein encoded by the same gene are also referred to as a wild-type yggB gene and a wild-type YggB protein, respectively.
  • Examples of the wild type YggB protein include a protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 26.
  • the C-terminal side mutation is a mutation introduced into a part of the base sequence of the region encoding the sequence of amino acid numbers 419 to 533 of SEQ ID NO: 26.
  • the C-terminal mutation is not particularly limited as long as the mutation is introduced into at least a part of the base sequence of the above region, but preferably has an insertion sequence (hereinafter also referred to as “IS”) or a transposon inserted therein.
  • the C-terminal mutation may be any of those accompanied by amino acid substitution (missense mutation), those having a frameshift mutation introduced by insertion of the IS or the like, and those having a nonsense mutation introduced.
  • Examples of the C-terminal mutation include a mutation (2A-1 type mutation) in which a base sequence is inserted at a position encoding the 419th valine residue of the wild type YggB protein.
  • the 2A-1 type mutation may cause, for example, deletion or substitution of some or all of amino acid residues at positions 419 to 533 of the wild type YggB protein.
  • mutant yggB gene having a 2A-1 type mutation for example, IS is inserted after “G” at position 1255 of SEQ ID NO: 25, and the original wild-type YggB protein (SEQ ID NO: 26)
  • a yggB gene encoding a mutant YggB protein having a short full-length 423 amino residues can be mentioned (Japanese Patent Laid-Open No. 2007-222163).
  • examples of the C-terminal mutation include a mutation that substitutes a proline residue existing at positions 419 to 533 of the wild type YggB protein with another amino acid.
  • proline residues include wild-type YggB protein at positions 424, 437, 453, 457, 462, 469, 484, 489, 497, 515, 529, and 533. Of proline residues.
  • the YggB protein encoded by the yggB gene has five transmembrane regions.
  • the transmembrane regions are amino acid numbers 1 to 23 (first transmembrane region), 25 to 47 (second transmembrane region), and 62 to 84 (third membrane), respectively. This corresponds to the region of through region), 86 to 108 (fourth membrane penetration region), and 110 to 132 (fifth membrane penetration region).
  • the yggB gene may have a mutation in the region encoding these transmembrane regions.
  • the mutation in the transmembrane region is preferably a mutation including substitution, deletion, addition, insertion or inversion of one or several amino acids, and is not accompanied by a frameshift mutation and a nonsense mutation.
  • one or several amino acids for example, Cys-Ser-Leu
  • a mutation that replaces the alanine residue at position 100 with another amino acid residue for example, an amino acid having a hydroxyl group in the side chain (Thr, Ser, or Tyr), preferably Thr
  • other amino acid residues for example, amino acids having a hydroxyl group in the side chain (Thr, Ser, or Tyr), preferably Thr
  • a mutant yggB gene having such a transmembrane region mutation specifically, for example, a yggB gene (A1 mutation) in which TTCATTGTG is inserted after “G” at position 44 of SEQ ID NO: 25, YggB gene (19 type mutation) in which “G” at position 298 in No. 25 is replaced with “A”, and yggB gene (L30 type mutation) in which “C” at position 332 in SEQ ID No. 25 is replaced with “T” Is mentioned.
  • the mutant yggB gene is mutated into a region encoding an amino acid residue corresponding to the amino acid residue at the above position in SEQ ID NO: 26. As long as it has.
  • which amino acid residue is the “amino acid residue corresponding to the amino acid residue at the above position in SEQ ID NO: 26” is determined based on the amino acid sequence of the wild type YggB protein and SEQ ID NO: 26. It can be determined by alignment with the amino acid sequence. “Amino acid number X of SEQ ID NO: 26” may be read as “X position of SEQ ID NO: 26”.
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-glutamine production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-glutamine biosynthesis enzymes is increased.
  • Examples of such an enzyme include, but are not limited to, glutamate dehydrogenase (gdhA) and glutamine synthetase (glnA).
  • the activity of glutamine synthetase may be enhanced by disrupting the glutamine adenylyltransferase gene (glnE) or the PII regulatory protein gene (glnB) (EP1229121).
  • the method for imparting or enhancing L-glutamine production ability is, for example, selected from an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-glutamine to produce a compound other than L-glutamine.
  • an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-glutamine to produce a compound other than L-glutamine.
  • a method of modifying the bacterium so that the activity of the further enzyme is reduced can also be mentioned.
  • Such an enzyme is not particularly limited, and includes glutaminase.
  • L-glutamine producing bacteria or parent strains for inducing them include, for example, coryneform bacteria (EP1229121, EP1424398) having enhanced activity of glutamate dehydrogenase (gdhA) and / or glutamine synthetase (glnA), A coryneform bacterium having a reduced glutaminase activity (Japanese Patent Application Laid-Open No. 2004-187684).
  • Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11573 (FERM P-5492; JP 56-161495) Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11576 (FERM BP-10381; JP 56-161495) Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ12212 (FERM P-8123; JP-A 61-202694)
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-proline production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-proline biosynthesis enzymes is increased.
  • Such enzymes include glutamate-5-kinase (proB), ⁇ -glutamyl-phosphate reductase, pyrroline-5-carboxylate reductase (putA).
  • proB glutamate-5-kinase
  • PDA pyrroline-5-carboxylate reductase
  • the proB gene German Patent No. 3127361
  • the proB gene German Patent No. 3127361 encoding glutamate-5-kinase in which feedback inhibition by L-proline is released can be suitably used.
  • a method for imparting or enhancing L-proline production ability for example, a method of modifying bacteria so that the activity of an enzyme involved in L-proline degradation is reduced.
  • an enzyme include proline dehydrogenase and ornithine aminotransferase.
  • L-threonine producing bacteria examples include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-threonine biosynthetic enzymes is increased. .
  • enzymes include, but are not limited to, aspartokinase III (lysC), aspartate semialdehyde dehydrogenase (asd), aspartokinase I (thrA), homoserine kinase (thrB), threonine synthase ( threonine synthase) (thrC), aspartate aminotransferase (aspartate transaminase) (aspC).
  • aspartokinase III lysC
  • aspartate semialdehyde dehydrogenase aspartokinase I
  • thrB homoserine kinase
  • thrC threonine synthase
  • aspartate aminotransferase aspartate transaminase
  • the L-threonine biosynthesis gene may be introduced into a strain in which threonine degradation is suppressed.
  • the activity of the L-threonine biosynthetic enzyme is inhibited by the final product L-threonine. Therefore, in order to construct an L-threonine-producing bacterium, it is preferable to modify the L-threonine biosynthetic gene so that it is not subject to feedback inhibition by L-threonine.
  • the thrA, thrB, and thrC genes constitute a threonine operon, and the threonine operon forms an attenuator structure. Expression of the threonine operon is inhibited by isoleucine and threonine in the culture medium, and is suppressed by attenuation.
  • Enhanced expression of the threonine operon can be achieved by removing the leader sequence or attenuator in the attenuation region (Lynn, S. P., Burton, W. S., Donohue, T. J., Gould, R. M., Gumport, R. I., and Gardner, J. F. J. Mol. Biol. 194: 59-69 1987 (1987); WO02 / 26993; WO2005 / 049808; WO2003 / 097839).
  • the threonine operon may be constructed so that a gene involved in threonine biosynthesis is expressed under the control of a lambda phage repressor and promoter (see European Patent No. 0593792).
  • Bacteria modified so as not to be subjected to feedback inhibition by L-threonine can also be obtained by selecting a strain resistant to ⁇ -amino- ⁇ -hydroxyvaleric acid (AHV), which is an L-threonine analog.
  • HAV ⁇ -amino- ⁇ -hydroxyvaleric acid
  • the threonine operon modified so as not to be subjected to feedback inhibition by L-threonine is improved in the expression level in the host by increasing the copy number or being linked to a strong promoter.
  • An increase in copy number can be achieved by introducing a plasmid containing a threonine operon into the host.
  • An increase in copy number can also be achieved by transferring the threonine operon onto the host genome using a transposon, Mu phage, or the like.
  • examples of a method for imparting or enhancing L-threonine production ability include a method for imparting L-threonine resistance to a host and a method for imparting L-homoserine resistance.
  • the imparting of resistance can be achieved, for example, by enhancing the expression of a gene that imparts resistance to L-threonine or a gene that imparts resistance to L-homoserine.
  • genes that confer resistance include rhtA gene (Res. Microbiol. 154: 123-135 (2003)), rhtB gene (European Patent Application Publication No. 0994190), rhtC gene (European Patent Application Publication No.
  • the thrA gene encoding aspartokinase homoserine dehydrogenase I of E. coli has been revealed (nucleotide numbers 337-2799, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990).
  • the thrA gene is located between the thrL gene and the thrB gene in the chromosome of E. coli K-12.
  • the thrB gene encoding homoserine kinase of Escherichia coli has been elucidated (nucleotide numbers 2801 to 3733, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990).
  • the thrB gene is located between the thrA gene and the thrC gene in the chromosome of E. coli K-12.
  • the thrC gene encoding threonine synthase from E.coli has been elucidated (nucleotide numbers 3734 to 5020, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990).
  • the thrC gene is located between the thrB gene and the yaaX open reading frame in the chromosome of E. coli K-12.
  • thrA * BC operon containing a mutant thrA gene encoding an aspartokinase homoserine dehydrogenase I resistant to feedback inhibition by threonine and a wild type thrBC gene is known in the threonine-producing strain E. coli VKPM B-3996. It can be obtained from plasmid pVIC40 (US Pat. No. 5,705,371).
  • the rhtA gene of E. coli is present at 18 minutes of the E. coli chromosome close to the glnHPQ operon, which encodes a glutamine transport system element.
  • the rhtA gene is the same as ORF1 (ybiF gene, nucleotide numbers 764 to 1651, GenBank accession number AAA218541, gi: 440181), and is located between the pexB gene and the ompX gene.
  • the unit that expresses the protein encoded by ORF1 is called rhtA gene (rht: resistant toosehomoserine andeonthreonine (resistant to homoserine and threonine)).
  • the asd gene of E. coli has already been clarified (nucleotide numbers 3572511 to 3571408, GenBank accession NC_000913.1, gi: 16131307), and can be obtained by PCR using primers prepared based on the nucleotide sequence of the gene ( White, TJ et al., Trends Genet., 5, 185 (1989)).
  • the asd gene of other microorganisms can be obtained similarly.
  • the aspC gene of E. ⁇ ⁇ coli has already been clarified (nucleotide numbers 983742 to 984932, GenBank accession NC_000913.1, gi: 16128895), and obtained by PCR using a primer prepared based on the nucleotide sequence of the gene be able to.
  • the aspC gene of other microorganisms can be obtained similarly.
  • coryneform bacteria having L-threonine-producing ability examples include Corynebacterium acetoacidophilum AJ12318123 (FERM BP-1172) (see US Patent No. 5,188,949).
  • Examples of a method for imparting or enhancing L-lysine production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-lysine biosynthesis enzymes is increased.
  • Such enzymes include, but are not limited to, dihydrodipicolinate synthase (dapA), aspartokinase III (lysC), dihydrodipicolinate reductase (dapB), diaminopimelate Deaminopimelate decarboxylase (lysA), diaminopimelate dehydrogenase (ddh) (US Pat. No.
  • phosphoenolpyruvate carboxylase ppc
  • aspartate semialdehyde dehydrogenase aspartate semialdehyde dehydrogenase
  • Asd aspartate aminotransferase (aspartate transaminase)
  • dapF diaminopimelate epi Diaminopimelate epimerase
  • dapD tetrahydrodipicolinate succinylase
  • dapE succinyl-diaminopimelate deacylase
  • aspartase aspartase (195) ).
  • dihydrodipicolinate reductase diaminopimelate decarboxylase, diaminopimelate dehydrogenase, phosphoenolpyruvate carboxylase, aspartate aminotransferase, diaminopimelate epimerase, aspartate semialdehyde dehydrogenase, tetrahydrodipicolinate succinylase, and
  • the activity of one or more enzymes selected from succinyl diaminopimelate deacylase is enhanced.
  • a gene (cyo) (EP 1170376 A) involved in energy efficiency, a gene encoding nicotinamide nucleotide transhydrogenase (pntAB) ( US Pat. No. 5,830,716), ybjE gene (WO2005 / 073390), or combinations thereof may have increased expression levels.
  • Aspartokinase III (lysC) is subject to feedback inhibition by L-lysine.
  • a mutant lysC gene encoding aspartokinase III that has been desensitized to feedback inhibition by L-lysine is used. It may be used (US Pat. No.
  • the method for imparting or enhancing L-lysine production ability is, for example, selected from enzymes that catalyze the reaction of branching from the biosynthetic pathway of L-lysine to produce compounds other than L-lysine.
  • enzymes that catalyze the reaction of branching from the biosynthetic pathway of L-lysine to produce compounds other than L-lysine.
  • a method of modifying the bacterium so that the activity of the further enzyme is reduced can also be mentioned.
  • Such enzymes include, but are not limited to, homoserine dehydrogenase, lysine decarboxylase (US Pat. No. 5,827,698), and malic enzyme (WO2005 / 010175). .
  • a method for imparting or enhancing L-lysine producing ability for coryneform bacteria for example, a method of modifying the bacteria so that the activity of the lysine excretion system (lysE) is increased (WO97 / 23597). ).
  • the lysE gene of Corynebacterium glutamicum ATCC 13032 corresponds to the complementary sequence of the 1329712-1330413 sequence in the genome sequence registered in the NCBI database as GenBank accession NC_006958 (VERSION NC_006958.1 GI: 62388892).
  • the LysE protein of Corynebacterium glutamicum ATCC13032 is registered as GenBank accession YP_225551 (YP_225551.1 GI: 62390149).
  • L-lysine-producing bacteria or parent strains for inducing them include mutants having resistance to L-lysine analogs.
  • L-lysine analogs inhibit the growth of bacteria such as Enterobacteriaceae and coryneform bacteria, but this inhibition is completely or partially released when L-lysine is present in the medium.
  • the L-lysine analog is not particularly limited, and examples thereof include oxalysine, lysine hydroxamate, S- (2-aminoethyl) -L-cysteine (AEC), ⁇ -methyllysine, and ⁇ -chlorocaprolactam.
  • Mutant strains having resistance to these lysine analogs can be obtained by subjecting bacteria to normal artificial mutation treatment.
  • coryneform bacteria having L-lysine-producing ability examples include, for example, AEC-resistant mutant strains (Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ11082 (NRRL 470 B-11470) strain, etc .; Japanese Patent Publication No. 56-1914, Japanese Patent Publication No. 56- No. 1915, No. 57-14157, No. 57-14158, No. 57-30474, No. 58-10075, No. 59-4993, No. 61-35840 No.
  • L-homoserine for its growth Mutants that require amino acids such as (see Japanese Patent Publication Nos. 48-28078 and 56-6499); exhibit resistance to AEC, and further L-leucine, L-homoserine, L-proline, L-serine Mutants requiring amino acids such as L-arginine, L-alanine and L-valine (US Pat. No.
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-arginine-producing ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-arginine biosynthesis enzymes is increased. .
  • Examples of such enzymes include, but are not limited to, N-acetylglutamate synthase (argA), N-acetylglutamylphosphate reductase (argC), ornithine acetyltransferase (argJ), N-acetylglutamate kinase (argB), acetylornithine Examples include transaminase (argD), acetylornithine deacetylase (argE) ornithine carbamoyltransferase (argF), argininosuccinate synthase (argG), argininosuccinate lyase (argH), and carbamoyl phosphate synthase (carAB).
  • argA N-acetylglutamate synthase
  • argC N-acetylglutamylphosphate reductase
  • argJ ornithine acetyltransferase
  • N-acetylglutamate synthase (argA) gene examples include mutant N-acetylglutamate synthase in which amino acid residues corresponding to the 15th to 19th positions of the wild type are substituted and feedback inhibition by L-arginine is released. It is preferable to use a gene to be encoded (European Application Publication No. 1170361).
  • L-arginine-producing bacteria or parent strains for inducing them include strains lacking ArgR, an arginine repressor (US Patent Application Publication No. 2002-0045223), and strains that increase intracellular glutamine synthetase activity (US Coryneform bacteria such as Japanese Patent Application Publication No. 2005-0014236).
  • L-arginine-producing bacteria or parent strains for inducing them include mutants of coryneform bacteria having resistance to amino acid analogs and the like.
  • examples of such a strain include, in addition to 2-thiazolealanine resistance, a strain having L-histidine, L-proline, L-threonine, L-isoleucine, L-methionine, or L-tryptophan auxotrophic No. 54-44096); strains resistant to ketomalonic acid, fluoromalonic acid, or monofluoroacetic acid (JP 57-18989); strains resistant to argininol (Japanese Patent Publication No.
  • a strain resistant to X-guanidine (X is a fatty chain or a derivative thereof) (Japanese Patent Laid-Open No. 2-186995); a strain resistant to arginine hydroxamate and 6-azauracil (Japanese Patent Laid-Open No. 57-150381) ).
  • Specific examples of coryneform bacteria having the ability to produce L-arginine include the following strains.
  • L-citrulline and L-ornithine-producing bacteria share a biosynthetic pathway with L-arginine.
  • N-acetylglutamate synthase argA
  • N-acetylglutamylphosphate reductase argC
  • ornithine acetyltransferase argJ
  • N-acetylglutamate kinase argB
  • acetylornithine transaminase argD
  • WO 2006-35831 By increasing the enzyme activity of deacetylase (argE), the ability to produce L-citrulline and / or L-ornithine can be imparted or enhanced (WO 2006-35831).
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-histidine production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-histidine biosynthesis enzymes is increased.
  • Examples of such an enzyme include, but are not limited to, ATP phosphoribosyltransferase (hisG), phosphoribosyl-AMP cyclohydrolase (hisI), phosphoribosyl-ATP pyrophosphohydrolase (hisI), phosphoribosylformimino-5-aminoimidazole carboxamide ribonucleoside.
  • tide isomerase (hisA), amide transferase (hisH), histidinol phosphate aminotransferase (hisC), histidinol phosphatase (hisB), and histidinol dehydrogenase (hisD).
  • hisA tide isomerase
  • hisH amide transferase
  • hisC histidinol phosphate aminotransferase
  • hisB histidinol phosphatase
  • hisD histidinol dehydrogenase
  • L-histidine biosynthetic enzymes encoded by hisG and hisBHAFI are known to be inhibited by L-histidine. Therefore, the ability to produce L-histidine can be imparted or enhanced, for example, by introducing a mutation that confers resistance to feedback inhibition in the ATP phosphoribosyltransferase gene (hisG) ( Russian Patent No. 2003677 and No. 2). 2119536).
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-cysteine production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-cysteine biosynthesis enzymes is increased.
  • Examples of such an enzyme include, but are not limited to, serine acetyltransferase (cysE) and 3-phosphoglycerate dehydrogenase (serA).
  • Serine acetyltransferase activity can be enhanced, for example, by introducing a mutant cysE gene encoding a mutant serine acetyltransferase resistant to feedback inhibition by cysteine into bacteria.
  • Mutant serine acetyltransferases are disclosed, for example, in JP-A-11-155571 and US Patent Publication No. 20050112731. Further, the 3-phosphoglycerate dehydrogenase activity can be enhanced by introducing, for example, a mutant serA gene encoding a mutant 3-phosphoglycerate dehydrogenase resistant to feedback inhibition by serine into a bacterium. Mutant 3-phosphoglycerate dehydrogenase is disclosed, for example, in US Pat. No. 6,180,373.
  • the method for imparting or enhancing L-cysteine production ability is selected from, for example, an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthesis pathway of L-cysteine to produce a compound other than L-cysteine.
  • an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthesis pathway of L-cysteine to produce a compound other than L-cysteine Alternatively, a method of modifying the bacterium so that the activity of the further enzyme is reduced can also be mentioned.
  • examples of such enzymes include enzymes involved in the degradation of L-cysteine.
  • the enzyme involved in the degradation of L-cysteine is not particularly limited, and examples thereof include cysteine desulfhydrase (aecD) (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-233384).
  • examples of methods for imparting or enhancing L-cysteine production ability include enhancing the L-cysteine excretion system and enhancing the sulfate / thiosulfate transport system.
  • proteins of the L-cysteine excretion system include proteins encoded by the ydeD gene (JP 2002-233384), proteins encoded by the yfiK gene (JP 2004-49237), emrAB, emrKY, yojIH, acrEF, bcr, And each protein encoded by each gene of cusA (Japanese Patent Laid-Open No.
  • sulfate / thiosulfate transport system protein examples include proteins encoded by the cysPTWAM gene cluster.
  • coryneform bacteria having L-cysteine-producing ability examples include coryneform bacteria in which intracellular serine acetyltransferase activity is increased by retaining serine acetyltransferase with reduced feedback inhibition by L-cysteine (for example, JP-A-2002-233384).
  • Examples of a method for imparting or enhancing L-serine production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-serine biosynthetic enzymes is increased.
  • Examples of such enzymes include, but are not limited to, 3-phosphoglycerate dehydrogenase (serA), phosphoserine transaminase (serC), and phosphoserine phosphatase (serB) (Japanese Patent Laid-Open No. 11-253187).
  • the 3-phosphoglycerate dehydrogenase activity can be enhanced, for example, by introducing a mutant serA gene encoding a mutant 3-phosphoglycerate dehydrogenase resistant to feedback inhibition by serine into bacteria. Mutant 3-phosphoglycerate dehydrogenase is disclosed, for example, in US Pat. No. 6,180,373.
  • L-serine-producing bacteria or parent strains for inducing them examples include coryneform bacteria that are resistant to azaserine or ⁇ - (2-thienyl) -DL-alanine and lack L-serine resolution. (JP-A-10-248588).
  • coryneform bacteria include, for example, Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ13324 (FERM P-16128) ⁇ ⁇ , which is resistant to azaserine and lacks L-serine resolution, and ⁇ - (2- Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ13325 (FERM ⁇ ⁇ P-16129) ⁇ ⁇ that is resistant to thienyl) -DL-alanine and lacks the resolution of L-serine (Japanese Patent Laid-Open No. 10-248588).
  • L-methionine producing bacteria examples include L-threonine-requiring strains and mutants having resistance to norleucine (Japanese Patent Laid-Open No. 2000-139471).
  • examples of L-methionine-producing bacteria or parent strains for deriving them also include strains that retain mutant homoserine transsuccinylase that is resistant to feedback inhibition by L-methionine (Japanese Patent Laid-Open No. 2000-139471). , US20090029424).
  • L-methionine is biosynthesized with L-cysteine as an intermediate, L-methionine production ability can be improved by improving L-cysteine production ability (Japanese Patent Laid-Open No. 2000-139471, US20080311632).
  • Examples of the method for imparting or enhancing the ability to produce L-leucine include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-leucine biosynthesis enzymes is increased. .
  • Examples of such an enzyme include, but are not limited to, an enzyme encoded by a gene of leuABCD operon.
  • a mutant leuA gene US Pat. No. 6,403,342
  • encoding isopropyl malate synthase from which feedback inhibition by L-leucine has been released can be suitably used.
  • Coryneform bacteria having L-leucine-producing ability include, for example, Corynebacterium amicglutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ3718 (FERM P-2516), which is resistant to 2-thiazolealanine and ⁇ -hydroxyleucine, and is auxotrophic for isoleucine and methionine. Is mentioned.
  • Examples of the method for imparting or enhancing L-isoleucine producing ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-isoleucine biosynthesis enzymes is increased.
  • Examples of such an enzyme include, but are not limited to, threonine deaminase and acetohydroxy acid synthase (JP-A-2-458, FR 0356739, and US Pat. No. 5,998,178).
  • coryneform bacteria having the ability to produce L-isoleucine examples include, for example, coryneform bacteria (JP 2001-169788) in which a brnE gene encoding a branched-chain amino acid excretion protein is amplified, and protoplast fusion with L-lysine-producing bacteria.
  • coryneform bacteria imparted with isoleucine-producing ability Japanese Patent Laid-Open No. Sho 62-74293
  • coryneform bacteria enhanced with homoserine dehydrogenase Japanese Patent Laid-Open No. Sho 62-91193
  • threonine hydroxamate resistant strain Japanese Patent Laid-Open No.
  • Examples of a method for imparting or enhancing L-valine production ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of one or more enzymes selected from L-valine biosynthetic enzymes is increased.
  • Examples of such enzymes include, but are not limited to, enzymes encoded by genes of ilvGMEDA operon and ilvBNC operon. ilvBN encodes acetohydroxy acid synthase, and ilvC encodes isomeroreductase (WO 00/50624).
  • the ilvGMEDA operon and the ilvBNC operon are subject to expression suppression (attenuation) by L-valine, L-isoleucine, and / or L-leucine. Therefore, in order to enhance the enzyme activity, it is preferable to remove or modify the region necessary for attenuation and to cancel the expression suppression by the produced L-valine.
  • the threonine deaminase encoded by the ilvA gene is an enzyme that catalyzes the deamination reaction from L-threonine to 2-ketobutyric acid, which is the rate-limiting step of the L-isoleucine biosynthesis system. Therefore, for L-valine production, it is preferable that the ilvA gene is disrupted and the threonine deaminase activity is reduced.
  • the method for imparting or enhancing L-valine-producing ability is, for example, selected from enzymes that catalyze a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-valine to produce a compound other than L-valine.
  • enzymes that catalyze a reaction that branches from the biosynthetic pathway of L-valine to produce a compound other than L-valine.
  • a method of modifying the bacterium so that the activity of the further enzyme is reduced can also be mentioned.
  • examples of such enzymes include, but are not limited to, threonine dehydratase involved in L-leucine synthesis and enzymes involved in D-pantothenic acid synthesis (International Publication No. 00/50624).
  • L-valine-producing bacteria or parent strains for inducing them include strains having resistance to amino acid analogs and the like. Such strains include, for example, L-isoleucine and L-methionine requirement, coryneform bacterial strains resistant to D-ribose, purine ribonucleoside, or pyrimidine ribonucleoside and capable of producing L-valine.
  • L-alanine producing bacteria examples include coryneform bacteria lacking H + -ATPase (Appl Microbiol Biotechnol. 2001 Nov; 57 (4): 534-40) and aspartic acid ⁇ -Coryneform bacteria with enhanced decarboxylase activity (JP 07-163383 A).
  • L-tryptophan producing bacteria L-phenylalanine producing bacteria, L-tyrosine producing bacteria>
  • methods for imparting or enhancing L-tryptophan production ability, L-phenylalanine production ability, and / or L-tyrosine production ability include biosynthesis of L-tryptophan, L-phenylalanine, and / or L-tyrosine.
  • Biosynthetic enzymes common to these aromatic amino acids are not particularly limited, but 3-deoxy-D-arabinohepturonic acid-7-phosphate synthase (aroG), 3-dehydroquinate synthase (aroB) Shikimate dehydrogenase (aroE), shikimate kinase (aroL), 5-enolic acid pyruvylshikimate 3-phosphate synthase (aroA), chorismate synthase (aroC) (European Patent No. 763127). Expression of genes encoding these enzymes is controlled by a tyrosine repressor (tyrR), and the activity of these enzymes may be enhanced by deleting the tyrR gene (European Patent No. 763127).
  • tyrR tyrosine repressor
  • L-tryptophan biosynthesis enzyme examples include, but are not limited to, anthranilate synthase (trpE), tryptophan synthase (trpAB), and phosphoglycerate dehydrogenase (serA).
  • trpE anthranilate synthase
  • trpAB tryptophan synthase
  • serA phosphoglycerate dehydrogenase
  • L-tryptophan production ability can be imparted or enhanced by introducing DNA containing a tryptophan operon.
  • Tryptophan synthase consists of ⁇ and ⁇ subunits encoded by trpA and trpB genes, respectively.
  • anthranilate synthase is subject to feedback inhibition by L-tryptophan
  • a gene encoding the enzyme into which a mutation that releases feedback inhibition is introduced may be used.
  • phosphoglycerate dehydrogenase is feedback-inhibited by L-serine
  • a gene encoding the enzyme into which a mutation that releases feedback inhibition is introduced may be used to enhance the activity of the enzyme.
  • L-tryptophan-producing ability is imparted or enhanced by increasing the expression of an operon consisting of malate synthase (aceB), isocitrate lyase (aceA), and isocitrate dehydrogenase kinase / phosphatase (aceK). (WO2005 / 103275).
  • the L-phenylalanine biosynthetic enzyme is not particularly limited, and examples thereof include chorismate mutase and prefenate dehydratase. Chorismate mutase and prefenate dehydratase are encoded by the pheA gene as a bifunctional enzyme. Since chorismate mutase-prefenate dehydratase is feedback-inhibited by L-phenylalanine, in order to enhance the activity of the enzyme, a gene encoding the enzyme into which a mutation that releases feedback inhibition is introduced may be used.
  • the L-tyrosine biosynthetic enzyme is not particularly limited, and examples thereof include chorismate mutase and prephenate dehydrogenase. Chorismate mutase and prefenate dehydrogenase are encoded by the tyrA gene as a bifunctional enzyme. Since chorismate mutase-prefenate dehydrogenase is feedback-inhibited by L-tyrosine, to enhance the activity of the enzyme, a gene encoding the enzyme into which a mutation that releases feedback inhibition is introduced may be used.
  • the L-tryptophan, L-phenylalanine, and / or L-tyrosine producing bacterium may be modified so that biosynthesis of aromatic amino acids other than the target aromatic amino acid is lowered.
  • L-tryptophan, L-phenylalanine, and / or L-tyrosine-producing bacteria may be modified so that the by-product uptake system is enhanced.
  • By-products include aromatic amino acids other than the desired aromatic amino acid. Examples of genes encoding uptake systems of by-products include, for example, uptake systems of tnaB and mtr, which are L-tryptophan uptake systems, and pheP, L-tyrosine, which are genes encoding uptake systems of L-phenylalanine. TyrP, which is a gene coding for (EP1484410).
  • coryneform bacteria having L-tryptophan-producing ability include, for example, Corynebacterium glutamicum 118AJ12118 (FERM BP-478 patent 01681002) resistant to sulfaguanidine, a strain into which tryptophan operon has been introduced (JP 63240794), coryneform And a strain into which a gene encoding shikimate kinase derived from a type bacterium has been introduced (Japanese Patent Laid-Open No. 01994749).
  • coryneform bacteria having the ability to produce L-phenylalanine include, for example, Corynebacterium amicglutamicum BPS-13 strain FER (FERM BP-1777), Corynebacterium glutamicum K77 (FERM BP-2062) having reduced phosphoenolpyruvate carboxylase or pyruvate kinase activity Corynebacterium glutamicum K78 (FERM BP-2063) (European Patent Publication No. 331145, Japanese Patent Laid-Open No. 02-303495) and tyrosine-requiring strain (Japanese Patent Laid-Open No. 05-049489).
  • coryneform bacteria having the ability to produce L-tyrosine include Corynebacterium glutamicum AJ11655 (FERM P-5836) (Japanese Patent Publication No. 2-6517), Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ12081 (FERM P-7249) -70093).
  • examples of a method for imparting or enhancing L-amino acid-producing ability include a method of modifying a bacterium so that the activity of discharging L-amino acid from the bacterium cell is increased.
  • the activity to excrete L-amino acids can be increased, for example, by increasing the expression of a gene encoding a protein that excretes L-amino acids.
  • genes encoding proteins that excrete various amino acids include b2682 gene (ygaZ), b2683 gene (ygaH), b1242 gene (ychE), and b3434 gene (yhgN) (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-300874) .
  • examples of a method for imparting or enhancing L-amino acid producing ability include a method for modifying bacteria so that the activity of a protein involved in sugar metabolism or a protein involved in energy metabolism is increased.
  • Proteins involved in sugar metabolism include proteins involved in sugar uptake and glycolytic enzymes.
  • genes encoding proteins involved in sugar metabolism include glucose 6-phosphate isomerase gene (pgi; WO 01/02542 pamphlet), phosphoenolpyruvate synthase gene (pps; EP 877090 specification) , Phosphoenolpyruvate carboxylase gene (ppc; WO 95/06114 pamphlet), pyruvate carboxylase gene (pyc; WO 99/18228 pamphlet, European application 1092776), phosphoglucomutase gene (Pgm; WO 03/04598 pamphlet), fructose diphosphate aldolase gene (pfkB, fbp; WO 03/04664 pamphlet), pyruvate kinase gene (pykF; WO 03/008609 pamphlet), transaldolase Gene (talB; WO03 / 008611 pamphlet), fumarase residue Examples include
  • genes encoding proteins involved in energy metabolism include a transhydrogenase gene (pntAB; US Pat. No. 5,830,716), a cytochrome bo type oxidase (cyoB; European Patent Application Publication No. 1070376) Is mentioned.
  • ⁇ 1-1-2> Nucleic Acid-Producing Bacteria Giving or enhancing the ability to produce purine-based substances can be performed by methods that have been employed for breeding purine-based substance-producing bacteria such as Bacillus bacteria and Escherichia bacteria. .
  • the ability to produce purine substances can be imparted or enhanced by imparting auxotrophy such as adenine requirement or by imparting resistance to drugs such as purine analogs and sulfaguanidine (See JP-B-38-23099, JP-B-54-17033, JP-B-55-45199, JP-B-57-14160, JP-B-57-41915, JP-B-59-42895, US2004-0166575A).
  • Mutants such as auxotrophic strains and drug-resistant strains having the ability to produce purine substances are subjected to mutation treatment of the parent strain or wild strain, and a mutant strain having a desired phenotype is selected using an appropriate selection medium. Can be obtained.
  • mutation treatment examples include X-ray irradiation, ultraviolet irradiation, N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), ethyl methane sulfonate (EMS), methyl methane sulfonate (MMS). ) And the like.
  • the ability to produce purine substances can be imparted or enhanced by enhancing the intracellular activity of enzymes involved in the biosynthesis of purine substances.
  • the activity of one enzyme may be enhanced, and the activity of two or more enzymes may be enhanced.
  • a method for enhancing the enzyme activity will be described later. Enhancing enzyme activity can be performed, for example, by modifying bacteria so that expression of a gene encoding the enzyme is enhanced. Techniques for enhancing gene expression are described in WO00 / 18935 pamphlet and European Patent Application Publication No. 1010755.
  • Purine nucleotides are biosynthesized using phosphoribosylpyrophosphate (PRPP) as an intermediate.
  • Purine nucleosides are biosynthesized by dephosphorylation of purine nucleotides.
  • enzymes involved in biosynthesis of these purine substances include PRPP synthetase (PRPP) (prs) and proteins encoded by purine operons.
  • purine operon examples include the Bacillus subtilis purEKBCSQLFMNHD operon (Bacilluscilsubtilis and Its Closest Relatives, Editor in Chief: AL Sonenshein, ASM Press, Washington DC, 2002) and Escherichia coli's purcher , Editor-in-Chief: FC-Neidhardt, ASM-Press, Washington DC, 1996).
  • the expression of the purine operon may be enhanced together, or the expression of one or more genes selected from genes contained in the purine operon may be enhanced.
  • one or more enzymes selected from, for example, PRPP synthetase (prs) and PRPP amidotransferase (purF).
  • the expression of the purine operon is suppressed by the purine repressor encoded by the purR gene.
  • purine operon expression can be enhanced, for example, by reducing the activity of the purine repressor (US Pat. No. 6,284,495).
  • Purine repressor activity can be reduced, for example, by disrupting the purR gene encoding the purine repressor (US Pat. No. 6,284,495).
  • the purine operon expression is controlled by a terminator-antiterminator sequence (also called an attenuator sequence) located downstream of the promoter (Ebbole, D. J. and Zalkin, kinH., J. Biol. Chem., 1987, 262, 8274-8287, Ebbole, D.
  • the expression of the purine operon can be enhanced, for example, by deleting the attenuator sequence.
  • the deletion of the attenuator sequence can be performed by the same technique as that for the gene destruction described later.
  • PRPP synthetase is subject to feedback inhibition by ADP. Therefore, for example, by retaining a mutant PRPP synthetase gene encoding a desensitized PRPP synthetase in which feedback inhibition by ADP is reduced or eliminated, the PRPP synthetase activity is enhanced and the purine substance production ability is improved.
  • the desensitized PRPP synthetase include those having a mutation in which Asp (D) at position 128 of wild type PRPP synthetase is replaced with Ala (A) (S. G. Bower et al., J. Biol). Chem., 264, 10287 (1989)).
  • PRPP amide transferase is subject to feedback inhibition by AMP and GMP.
  • the PRPP amide transferase activity is enhanced, Purine-based substance production ability can be improved (WO99 / 003988).
  • desensitized PRPP amide transferase include those having a mutation in which Lys (K) at position 326 of wild-type PRPP amide transferase is replaced with Gln (Q), and Lys (K at position 326 of wild-type PRPP amide transferase).
  • Pro (P) at position 410 is substituted with Trp (W) (G. Zhou et al., J. Biol. Chem., 269). , 6784 (1994)).
  • the purine substance production ability can be imparted or enhanced by reducing the activity of an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of the purine substance to produce another compound (WO99 / 003988). ).
  • the activity of one enzyme may be reduced, and the activity of two or more enzymes may be reduced.
  • the “enzyme that catalyzes the reaction of branching from the biosynthetic pathway of purine-based substances to produce other compounds” includes enzymes involved in the degradation of purine-based substances. A method for reducing the enzyme activity will be described later.
  • Examples of the enzyme that catalyzes the reaction of branching from the biosynthetic pathway of purine substances to produce other compounds include purine nucleoside phosphorylase (deoD, pupG), succinyl-AMP synthase (succinyl-AMP synthase) ) (PurA), adenosine deaminase (add), inosine-guanosine kinase (gsk), GMP reductase (guaC), 6-phosphogluconate dehydrase (6-phosphogluconate dehydrase) ) (Edd), phosphoglucoglucose isomerase (pgi), adenine deaminase (yicP), xanthosine phosphorylase (xapA), IMP dehydrogenase (guaB).
  • the enzyme that decreases the activity may be selected depending on the type of the purine substance of interest.
  • the ability to produce purine substances can be imparted or enhanced by reducing the activity of fructose bisphosphatase (fructosect1,6-bisphosphatase) (fbp) (WO2007 / 125782).
  • the purine-based substance-producing ability can be imparted or enhanced by reducing the activity of proteins involved in the incorporation of purine-based substances (WO99 / 003988).
  • a protein involved in purine nucleoside uptake includes nucleoside permease (nupG) (WO99 / 003988).
  • proteins involved in purine nucleoside excretion include rhtA (ybiF) gene (Russian Patent No. 2239656), yijE gene (Russian Patent No. 2244003), ydeD gene (Russian Patent No. 2244004), yicM Examples include proteins encoded by genes (Russian Patent No. 2271391), ydhL gene (Special Table 2007-530011), nepI gene (FEMS Microbiology Letters, Volume 250, Issue 1, pages 39-47, September 2005).
  • Inosinic acid-producing ability can be imparted or enhanced by imparting resistance to an analog of L-glutamine and resistance to an analog of proline to a bacterium (Japanese Patent Laid-Open No. 2004-516833).
  • L-glutamine analogs include azaserine and 6-diazo-5-oxo-L-norleucine (DON).
  • proline analogs examples include 3,4-dehydroproline, L-azetidine-2-carboxylic acid, L-thiazolidine-4-carboxylic acid, (S) -2,2-dimethyl-4-oxazolide carboxylic acid, ( S) -5,5-dimethyl-4-thiazolide carboxylic acid, (4S, 2RS) -2-ethyl-4-thiazolidine-carboxylic acid, (2S, 4S) -4-hydroxy-2-pyrroline-carboxylic acid , 2-piperidinecarboxylic acid, and 2,5-pyrrolidinedione.
  • inosinic acid producing bacteria examples include Corynebacterium ammoniagenes CJIP009 (KCCM-10226) (Japanese Patent Laid-Open No. 2004-516833).
  • the ability to produce xanthylic acid can be imparted or enhanced by a method used for breeding a xanthylic acid producing bacterium of a coryneform bacterium centering on Corynebacterium ammoniagenes.
  • Such methods include, for example, enhancement of PRPP-amidotransferase activity (Japanese Patent Laid-Open No. 8-168383), imparting resistance to aliphatic amino acids (Japanese Patent Laid-Open No. 4-262790), imparting resistance to dehydroproline (Korea Patent Publication No. 2003- 56490).
  • the methods for imparting or enhancing the purine substance production ability as described above may be used alone or in any combination.
  • Protein-Producing Bacteria Proteins can be secreted and produced by coryneform bacteria using a signal peptide that functions in coryneform bacteria. Specifically, a promoter sequence that functions in a coryneform bacterium, a nucleic acid sequence that encodes a signal peptide that functions in a coryneform bacterium connected downstream of the promoter sequence, and a downstream of a nucleic acid sequence that encodes the signal peptide
  • the target protein can be secreted and produced by allowing a coryneform bacterium to hold a gene construct containing a nucleic acid sequence encoding the target protein and expressing the target protein.
  • the nucleic acid sequence encoding the target protein may be linked downstream of the nucleic acid sequence encoding the signal peptide so that the heterologous protein is expressed as a fusion protein with the signal peptide.
  • Examples of coryneform bacteria used for protein secretion production include strains in which the activity of cell surface proteins is reduced. Examples of such a strain include C. glutamicum YDK010 strain (WO2004 / 029254) which is a cell surface protein PS2 deficient strain of C. glutamicum AJ12036 (FERM BP-734).
  • Examples of methods for imparting or enhancing protein secretory production ability include modifying coryneform bacteria so that the activity of penicillin-binding protein is reduced (WO2013 / 065869), and expression of a gene encoding a metallopeptidase. Modifying coryneform bacteria to increase (WO2013 / 065772), modifying coryneform bacteria to retain mutant ribosomal protein S1 gene (WO2013 / 118544), amino acid sequence containing Gln-Glu-Thr Is inserted between the signal peptide and the target protein to express the target protein (WO2013 / 062029).
  • the methods for imparting or enhancing the protein production ability as described above may be used alone or in any combination.
  • the bacterium of the present invention has xylose utilization property.
  • the bacterium of the present invention may inherently have xylose utilization, or may be modified to have xylose utilization.
  • Bacteria having xylose utilization can be obtained, for example, by imparting bacterial xylose utilization as described above or by enhancing the xylose utilization of bacteria as described above.
  • Xylose utilization can be imparted or enhanced by modifying bacteria so that the activity of one or more proteins selected from proteins constituting the xylose utilization pathway is increased.
  • the protein that increases the activity can be appropriately selected according to the type of coryneform bacterium to be used.
  • xylose utilization pathways include the following two pathways.
  • the bacterium of the present invention may have both pathways, or may have only one pathway.
  • Pathway 1 xylose ⁇ xylulose ⁇ xylulose-5 phosphate
  • path 2 xylose ⁇ xylonolactone ⁇ xylonic acid ⁇ 2-keto-3-deoxyxylonic acid ⁇ ⁇ -ketoglutarate semialdehyde ⁇ ⁇ -ketoglutarate
  • Path 1 is composed of xylose isomerase and xylulokinase.
  • Xylose isomerase refers to a protein having an activity of catalyzing the following reaction for isomerizing D-xylose to D-xylulose (EC 5.3.1.5). This activity is also referred to as “xylose isomerase activity”. D-Xylose ⁇ D-xylulose
  • Xylulokinase refers to a protein having an activity of catalyzing the following reaction that phosphorylates D-xylulose (EC 2.7.1.17). This activity is also referred to as “xylulokinase activity”. ATP + D-xylulose ⁇ ADP + D-xylulose 5-phosphate
  • An example of a gene encoding xylose isomerase is the xylA gene.
  • An example of a gene encoding xylulokinase is the xylB gene.
  • Examples of the xylA gene and xylB gene include Escherichia coli xylA gene and xylB gene.
  • the base sequence of xylAB operon of Escherichia coli K-12 MG1655 strain is shown in SEQ ID NO: 10.
  • the xylA gene and the xylB gene correspond to the sequence at positions 1 to 1323 and the sequence at positions 1395 to 2849, respectively.
  • the amino acid sequences of the XylA protein and XylB protein of Escherichia coli K-12 MG1655 strain are shown in SEQ ID NOs: 11 and 12, respectively.
  • Examples of the xylB gene include the xylB gene of Corynebacterium glutamicum.
  • the nucleotide sequence of the xylB gene of C. glutamicum ATCC13869 and the amino acid sequence of the XylB protein are shown in SEQ ID NOs: 35 and 36, respectively.
  • Pathway 2 consists of xylose dehydrogenase, xylonolactonase, xylonate dehydratase, 2-keto-3-deoxy-xylonate dehydratase , And alpha-ketoglutaric semialdehyde dehydrogenase.
  • the latter half of the pathway 2, ie, the pathway from xylonic acid to ⁇ -ketoglutarate constituted by xylonic acid dehydratase, 2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase, and ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase is referred to as “Weimberg It is also called “pathway” (J.JBiol. Chem., 236: 629-636). Further, the entire route 2 or Weimberg pathway is also referred to as “NXA (Novel Xylose Assimilation) route”.
  • Xylose dehydrogenase refers to a protein having an activity of catalyzing the following reaction for oxidizing D-xylose to D-xylonolactone (EC 1.1.1.175 or 1.1.1.179). This activity is also referred to as “xylose dehydrogenase activity”.
  • Xylonolactonase refers to a protein having an activity that catalyzes the following reaction for ring-opening D-xylononolactone (EC 3.1.1.68). This activity is also referred to as “xylonolactonase activity”. D-xylono-1,4-lactone + H 2 O ⁇ D-xylonate
  • Xylonic acid dehydratase refers to a protein having an activity of catalyzing the following reaction for dehydrating D-xylonic acid (EC 4.2.1.82). This activity is also referred to as “xylonic acid dehydratase activity”. D-xylonate ⁇ 2-dehydro-3-deoxy-D-xylonate + H 2 O
  • 2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase refers to a protein having an activity of catalyzing the following reaction for dehydrating 2-keto-3-deoxyxylonate (EC 4.2.1.-). This activity is also referred to as “2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase activity”.
  • ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase refers to a protein having an activity of catalyzing the following reaction for oxidizing ⁇ -ketoglutarate semialdehyde (EC 1.2.1.26). This activity is also referred to as “ ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase activity”. alpha-ketoglutaric semialdehyde + NADP + + H 2 O ⁇ 2-ketoglutarate + NADPH + 2H +
  • the gene encoding the enzyme constituting pathway 2 includes the xylXABCD operon gene.
  • the xylB gene encodes xylose dehydrogenase.
  • the xylC gene encodes xylonolactonase.
  • the xylD gene encodes xylate dehydratase.
  • the xylX gene encodes 2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase.
  • the xylA gene encodes ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase.
  • xylA gene and xylB gene encoding xylose isomerase and xylulokinase of pathway 1
  • xylA gene and xylB gene encoding ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase and xylose dehydrogenase of pathway 2
  • a gene is a different gene.
  • the xylXABCD operon includes the xylXABCD operon of Caulobacter crescentus.
  • Caulobacter escentcrescentus include CB15 strain, NA1000 strain, and K31 strain. Genomic sequences of Caulobacter crescentus CB15 strain, NA1000 strain, and K31 strain are registered in the NCBI database as GenBank Accession Nos. AE005673, CP001340, and CP000927, respectively.
  • the xylXABCD gene of Caulobacter crescentus 15 CB15 strain is registered under Gene_symbol of CC_0822, CC_0821, CC_0820, CC_0819, CC_0823, respectively.
  • the xylXABCD gene of Caulobacter crescentus NA1000 strain is registered under the Gene symbol of CCNA_00865, CCNA_00864, CCNA_00863, CCNA_00862, and CCNA_00866, respectively.
  • the xylABCD gene of Caulobacter crescentus CB15 strain (xylX is not identified) is registered in Gene symbol of Caul_4001, Caul_4002, Caul_4003, and Caul_4000, respectively.
  • the nucleotide sequences of the xylXABCD gene of Caulobacter crescentus CB15 strain are shown in SEQ ID NOs: 37, 39, 41, 43 and 45, respectively.
  • the amino acid sequences of the XylXABCD proteins of Caulobacter crescentus CB15 strain are shown in SEQ ID NOs: 38, 40, 42, 44, and 46, respectively.
  • examples of the xylose dehydrogenase gene include the xylB gene of the genus Sphingomonas or Pseudomonas, such as Sphingomonas elodea (former name Pseudomonas elodea).
  • Sphingomonas elodea former name Pseudomonas elodea
  • the nucleotide sequence of the xylB gene of Sphingomonas elodea and the amino acid sequence of the XylB protein are shown in SEQ ID NOs: 15 and 16, respectively.
  • examples of the xylonolactonase gene include the xylC gene of Sphingomonas spp. Or Pseudomonas spp. Such as Sphingomonas elodea (Pseudomonas elodea).
  • Sphingomonas elodea Pseudomonas elodea
  • the nucleotide sequence of the xylC gene of Sphingomonas elodea and the amino acid sequence of the XylC protein are shown in SEQ ID NOs: 17 and 18, respectively.
  • the xylonic acid dehydratase gene includes yjhG and yagF genes of Escherichia bacteria such as Escherichia coli, Agrobacterium genus bacteria such as Agrobacterium tumefaciens, Herbaspirillum seropedicae and the like.
  • XylD gene homologues of bacteria belonging to the genus Actinoplanes such as Actinoplanes missouriensis and Aspergillus oryzae such as Aspergillus oryzae.
  • the nucleotide sequence of the yagF gene and the amino acid sequence of the YagF protein of Escherichia coli K-12 MG1655 strain are shown in SEQ ID NOs: 19 and 20, respectively.
  • the 2-keto-3-deoxyxylonate dehydratase gene includes Agrobacterium tumefaciens and other Agrobacterium bacteria, Sphingomonas elodea (Pseudomonas elodea) and other Sphingomonas and Pseudomonas bacteria, Zobellia galactanibolans (Zobellia xylX gene homologues of Zoberia bacteria such as galactanivorans), Thermobacillus bacteria such as Thermobacillus composti, and Arthrobacter globiformis bacteria such as Arthrobacter globiformis.
  • the nucleotide sequence of the xylX gene of Sphingomonas elodea and the amino acid sequence of the XylX protein are shown in SEQ ID NOs: 21 and 22, respectively.
  • the ⁇ -ketoglutarate semialdehyde dehydrogenase gene includes azospirillum bacteria such as Azospirillum brasilense, xylA gene homologues of Halomonas bacteria such as Halomonas boliviensis, and Bacillus subtilis. ) And other ycbD genes of bacteria belonging to the genus Bacillus.
  • the nucleotide sequence of Bacillus subtilis ycbD gene and the amino acid sequence of YcbD protein are shown in SEQ ID NOs: 23 and 24, respectively.
  • glucose dehydrogenases (EC 1.1.1.47, EC 1.1.1.118, EC 1.1.1.119, EC 1.1.5.2, etc.) catalyze the reaction of oxidizing D-xylose to D-xylonolactone. Therefore, in order to impart or enhance xylose utilization, the activity of such glucose dehydrogenase may be enhanced instead of or in addition to the above xylose dehydrogenase.
  • glucose dehydrogenase include PseudomonasPputida S12 glucose dehydrogenase (Jean-PaulPaMeijnen et al., Appl Environ Microbiol. 2009 May; 75 (9) 2784-2791).
  • the glucose dehydrogenase of Pseudomonas ⁇ putida S12 catalyzes the reaction of oxidizing D-xylose to D-xylonolactone using pyrroloquinoline quinone as an electron acceptor.
  • a gene used for modification of bacteria such as imparting or enhancing the production ability of the target substance or imparting or enhancing xylose assimilation ability encodes a protein having the original function maintained
  • the above-described examples It is not limited to a gene or a gene having a known base sequence, and may be a variant thereof.
  • a gene used for bacterial modification is a protein having an amino acid sequence in which one or several amino acids at one or several positions are substituted, deleted, inserted or added in the amino acid sequence of a known protein It may be a gene encoding.
  • the description of NCgl2954 gene and protein variants encoded by it can be applied mutatis mutandis.
  • the bacterium of the present invention has improved xylose utilization by introducing a mutation into NCgl2954 gene.
  • the bacterium of the present invention can be obtained by improving the utilization of xylose by introducing a mutation into the NCgl2954 gene of a coryneform bacterium capable of producing a target substance.
  • the bacterium of the present invention can also be obtained by imparting the ability to produce a target substance after improving xylose utilization by introducing a mutation into the NCgl2954 gene of a coryneform bacterium.
  • the bacterium of the present invention may have acquired the ability to produce a target substance by improving xylose utilization by introducing a mutation into the NCgl2954 gene.
  • the modification for constructing the bacterium of the present invention can be performed in any order.
  • the improvement of xylose utilization may be due to the improvement of the xylose uptake ability. That is, the bacterium of the present invention may have improved xylose uptake ability by introducing a mutation into the NCgl2954 gene.
  • Improvement of xylose utilization (for example, improvement of xylose uptake ability) can be confirmed, for example, by confirming improvement in growth and xylose consumption when coryneform bacteria are cultured in a medium containing xylose as the sole carbon source. it can.
  • NCgl2954 gene and NCgl2954 protein The NCgl2954 gene is a gene encoding a transcription factor.
  • the protein encoded by the NCgl2954 gene is also called NCgl2954 protein.
  • the NCgl2954 gene of Corynebacterium glutamicum ATCC13032 corresponds to the sequence of positions 3261130 to 3261993 in the genome sequence registered as GenBank accession NC_003450 (VERSION NC_003450.3 GI: 58036263) in the NCBI database.
  • the NCgl2954 gene of Corynebacterium glutamicum ATCC13032 is synonymous with Cgl3059.
  • NCgl2954 protein of Corynebacterium glutamicum ATCC13032 is registered as GenBank accession NP_602251 (version NP_602251.2 GI: 23309012). Further, the nucleotide sequence of NCgl2954 gene of Corynebacterium glutamicum ATCC13869 and the amino acid sequence of NCgl2954 protein are shown in SEQ ID NOs: 13 and 14, respectively.
  • the NCgl2954 gene may be a variant of the NCgl2954 gene exemplified above as long as the original function is maintained.
  • the NCgl2954 protein may be a variant of the NCgl2954 protein exemplified above as long as the original function is maintained.
  • Such a variant in which the original function is maintained may be referred to as a “conservative variant”.
  • the term “NCgl2954 gene” is not limited to the NCgl2954 gene exemplified above, and includes conservative variants thereof.
  • the term “NCgl2954 protein” is not limited to the NCgl2954 protein exemplified above, but includes conservative variants thereof. Examples of conservative variants include the NCgl2954 gene and NCgl2954 protein homologues and artificially modified forms exemplified above.
  • the original function is maintained means that the variant of the gene or protein has a function (activity or property) corresponding to the function (activity or property) of the original gene or protein. That is, “the original function is maintained” means that in the NCgl2954 gene, a variant of the gene has a property of improving xylose utilization when, for example, it is deleted in a coryneform bacterium. Say. In addition, in the NCgl2954 gene, “the original function is maintained” may mean that the gene variant encodes a protein in which the original function is maintained. Similarly, “the original function is maintained” means that the NCgl2954 protein has a property of improving xylose utilization when a protein variant is deleted, for example, in coryneform bacteria. Say. Specifically, the improvement of xylose utilization may be due to the improvement of the xylose uptake ability. That is, “improving xylose utilization” may mean improving xylose uptake ability.
  • a variant of a gene or protein has the property of improving xylose utilization when deficient in a coryneform bacterium, for example, encodes the same gene or protein in a coryneform bacterium having xylose utilization This can be confirmed by confirming whether or not xylose utilization is improved by deleting the gene to be treated.
  • the homologue of the NCgl2954 gene can be easily obtained from a public database by, for example, a BLAST search or FASTA search using the base sequence of the NCgl2954 gene as a query sequence.
  • the homologue of the NCgl2954 gene can be obtained by PCR using, for example, a coryneform bacterium chromosome as a template and oligonucleotides prepared based on these known gene sequences as primers.
  • the NCgl2954 gene is a protein having an amino acid sequence in which one or several amino acids at one or several positions are substituted, deleted, inserted or added in the above amino acid sequence. You may code.
  • the above “one or several” varies depending on the position and type of the amino acid residue in the three-dimensional structure of the protein, but specifically, for example, 1 to 50, 1 to 40, 1 to 30, Preferably, it means 1-20, more preferably 1-10, even more preferably 1-5, particularly preferably 1-3.
  • substitution, deletion, insertion, or addition of one or several amino acids described above is a conservative mutation that maintains the protein function normally.
  • a typical conservative mutation is a conservative substitution.
  • Conservative substitution is a polar amino acid between Phe, Trp, and Tyr when the substitution site is an aromatic amino acid, and between Leu, Ile, and Val when the substitution site is a hydrophobic amino acid. In this case, between Gln and Asn, when it is a basic amino acid, between Lys, Arg, and His, when it is an acidic amino acid, between Asp and Glu, when it is an amino acid having a hydroxyl group Is a mutation that substitutes between Ser and Thr.
  • substitutions considered as conservative substitutions include substitution from Ala to Ser or Thr, substitution from Arg to Gln, His or Lys, substitution from Asn to Glu, Gln, Lys, His or Asp, Asp to Asn, Glu or Gln, Cys to Ser or Ala, Gln to Asn, Glu, Lys, His, Asp or Arg, Glu to Gly, Asn, Gln, Lys or Asp Substitution, Gly to Pro substitution, His to Asn, Lys, Gln, Arg or Tyr substitution, Ile to Leu, Met, Val or Phe substitution, Leu to Ile, Met, Val or Phe substitution, Substitution from Lys to Asn, Glu, Gln, His or Arg, substitution from Met to Ile, Leu, Val or Phe, substitution from Phe to Trp, Tyr, Met, Ile or Leu, Ser to Thr or Ala Substitution, substitution from Trp to Phe or Tyr, substitution
  • the NCgl2954 gene is 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, still more preferably 97% or more, particularly preferably relative to the entire amino acid sequence. May be a gene encoding a protein having 99% or more homology. In the present specification, “homology” means “identity”.
  • the NCgl2954 gene is a DNA that hybridizes under stringent conditions with a probe that can be prepared from a known gene sequence as long as the original function is maintained, for example, a complementary sequence to the whole or a part of the above base sequence. It may be.
  • Stringent conditions refers to conditions under which so-called specific hybrids are formed and non-specific hybrids are not formed.
  • highly homologous DNAs for example, 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, further preferably 97% or more, particularly preferably 99% or more between DNAs having homology.
  • the probe used for the hybridization may be a part of a gene complementary sequence.
  • a probe can be prepared by PCR using an oligonucleotide prepared on the basis of a known gene sequence as a primer and a DNA fragment containing the base sequence as a template.
  • a DNA fragment having a length of about 300 bp can be used as the probe.
  • hybridization washing conditions include 50 ° C., 2 ⁇ SSC, and 0.1% SDS.
  • the NCgl2954 gene may be one obtained by substituting an arbitrary codon with an equivalent codon as long as the original function is maintained.
  • a mutation is introduced into NCgl2954 gene specifically means that a mutation is introduced into the coding region and / or expression control region of NCgl2954 gene on the chromosome.
  • the “expression control region” is a general term for sites that affect gene expression. Examples of the expression control region include a promoter, Shine-Dalgarno (SD) sequence (also referred to as ribosome binding site (RBS)), and a spacer region between the RBS and the start codon.
  • SD Shine-Dalgarno
  • RBS ribosome binding site
  • the expression control region can be determined using, for example, a promoter search vector or gene analysis software such as GENETYX.
  • the mutation introduced into the NCgl2954 gene is not particularly limited as long as it improves the xylose utilization of coryneform bacteria.
  • Examples of the mutation that improves xylose utilization of coryneform bacteria include a mutation that attenuates the expression of the NCgl2954 gene and a mutation that destroys the NCgl2954 gene. That is, the bacterium of the present invention may have improved xylose utilization by, for example, weakening the expression of the NCgl2954 gene or destroying the gene.
  • Gene expression is weakened is also referred to as “gene expression is reduced”. “Gene expression decreases” means that the expression level of the gene per cell decreases as compared to an unmodified strain such as a wild strain or a parent strain. “Gene expression decreases” includes the case where the gene is not expressed at all. Gene expression may be reduced to, for example, 50% or less, 20% or less, 10% or less, 5% or less, or 0% compared to an unmodified strain.
  • the decrease in gene expression may be due to, for example, a decrease in transcription efficiency, a decrease in translation efficiency, or a combination thereof.
  • Reduction of gene expression can be achieved, for example, by modifying an expression control region such as a gene promoter, an SD sequence (RBS), or a spacer region between the RBS and the start codon.
  • the expression control region is preferably modified by 1 base or more, more preferably 2 bases or more, and particularly preferably 3 bases or more. Further, a part or all of the expression control region may be deleted.
  • reduction of gene expression can be achieved, for example, by introducing a mutation that reduces gene expression into the coding region of the gene.
  • gene expression can be reduced by replacing codons in the coding region of the gene with synonymous codons that are used less frequently in the host.
  • gene expression itself may be reduced by gene disruption as described below.
  • the gene is destroyed means that the gene is modified so that it does not produce a normally functioning protein. “Does not produce a protein that functions normally” includes the case where no protein is produced from the same gene, or the case where a protein whose function (activity or property) per molecule is reduced or lost is produced from the same gene. It is.
  • Gene disruption can be achieved, for example, by deleting part or all of the coding region of the gene on the chromosome. Furthermore, the entire gene including the sequences before and after the gene on the chromosome may be deleted.
  • the sequence before and after the gene may include, for example, a gene expression control region.
  • the region to be deleted may be any region such as an N-terminal region, an internal region, or a C-terminal region. Usually, the longer region to be deleted can surely inactivate the gene. Moreover, it is preferable that the reading frames of the sequences before and after the region to be deleted do not match.
  • gene disruption is, for example, introducing an amino acid substitution (missense mutation) into a coding region of a gene on a chromosome, introducing a stop codon (nonsense mutation), or adding or deleting 1 to 2 bases. It can also be achieved by introducing a frameshift mutation (Journal of Biological Chemistry 272: 8611-8617 (1997), Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 95 5511-5515 (1998), Journal of Biological Chemistry 26 116, 20833-20839 (1991)).
  • gene disruption can be achieved, for example, by inserting another sequence into the coding region of the gene on the chromosome.
  • the insertion site may be any region of the gene.
  • the longer the sequence to be inserted the more reliable the gene can be inactivated.
  • Other sequences are not particularly limited as long as gene disruption can be achieved, and examples thereof include marker genes such as antibiotic resistance genes and genes useful for production of target substances.
  • Modifying a gene on a chromosome as described above includes, for example, deleting a partial sequence of the gene and preparing a deleted gene modified so as not to produce a normally functioning protein.
  • the host is transformed with the recombinant DNA containing, and the homologous recombination is caused between the deletion type gene and the wild type gene on the chromosome, thereby replacing the wild type gene on the chromosome with the deletion type gene. Can be achieved.
  • the recombinant DNA can be easily manipulated by including a marker gene in accordance with a trait such as auxotrophy of the host.
  • the introduction of the mutation may be performed by a mutation process, for example.
  • Mutation treatments include X-ray irradiation, UV irradiation, and N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), ethylmethanesulfonate (EMS), and methylmethanesulfonate (MMS). ) And the like.
  • the decrease in gene expression can be confirmed by confirming that the transcription amount of the gene has decreased, or confirming that the amount of protein expressed from the gene has decreased.
  • the amount of transcription of the gene has been reduced by comparing the amount of mRNA transcribed from the same gene with that of the unmodified strain.
  • methods for evaluating the amount of mRNA include Northern hybridization, RT-PCR, and the like (Molecular cloning (Cold spring spring Laboratory Laboratory, Cold spring Harbor (USA), 2001)).
  • the amount of mRNA may be reduced to, for example, 50% or less, 20% or less, 10% or less, 5% or less, or 0% compared to the unmodified strain.
  • the amount of protein may be reduced to, for example, 50% or less, 20% or less, 10% or less, 5% or less, or 0% compared to the unmodified strain.
  • the gene has been destroyed by determining part or all of the nucleotide sequence, restriction enzyme map, full length, etc. of the gene according to the means used for the destruction.
  • mutations introduced into the NCgl2954 gene include the mutations shown in the following (1) to (7).
  • the expression of the NCgl2954 gene may be weakened, or the NCgl2954 gene may be destroyed.
  • the NCgl2954 gene having no mutation shown in (1) to (7) below is referred to as “wild type NCgl2954 gene”, and the NCgl2954 gene having the mutation shown in (1) to (7) below is also referred to as “mutant NCgl2954 gene”.
  • wild type NCgl2954 gene The protein encoded by the wild type NCgl2954 gene is also referred to as “wild type NCgl2954 protein”, and the protein encoded by the mutant NCgl2954 gene is also referred to as “mutant NCgl2954 protein”.
  • wild type NCgl2954 gene examples include the NCgl2954 gene exemplified above and conservative variants thereof.
  • the “other amino acid residue” is not particularly limited as long as it is other than the amino acid residue before substitution.
  • ⁇ other amino acid residues '' specifically, lysine, ornithine, arginine, histidine, isoleucine, alanine, valine, leucine, glycine, threonine, serine, proline, phenylalanine, tyrosine, tryptophan, cysteine, methionine, glutamic acid, Among the aspartic acid, glutamine, and asparagine, those other than the amino acid residue before substitution are exemplified.
  • the proline residue at position 483 may be substituted with, for example, a leucine residue.
  • the cysteine residue at position 334 may be substituted with, for example, an arginine residue.
  • the leucine residue at position 365 may be substituted with a serine residue, for example.
  • the leucine residue at position 366 may be substituted with, for example, an arginine residue.
  • the alanine residue at position 367 may be substituted with a phenylalanine residue, for example.
  • the tyrosine residue at position 377 may be substituted with, for example, an asparagine residue.
  • the mutant NCgl2954 gene may have one or more mutations selected from these mutations.
  • the mutant NCgl2954 gene may have the above mutations (4) to (7) as a set.
  • a mutant NCgl2954 gene generated by deletion of GC at positions 1092 and 1093 of the wild type NCgl2954 gene shown in SEQ ID NO: 13 is located at positions 365 to 367 of the wild type NCgl2954 protein shown in SEQ ID NO: 14. It encodes a mutant NCgl2954 protein in which the leucine-leucine-alanine residue is replaced with a serine-arginine-phenylalanine residue and the amino acid residues after position 368 are deleted.
  • the amino acid residue at the X position of the wild-type NCgl2954 protein means an amino acid residue corresponding to the amino acid residue at the X position in SEQ ID NO: 14 unless otherwise specified.
  • the mutations shown in the above (1) to (7) may be as follows.
  • the “X position” in the amino acid sequence means the X position from the N terminal of the amino acid sequence, and the amino acid residue at the N terminal is the first amino acid residue. That is, the position of the amino acid residue indicates a relative position, and the position may be moved back and forth by amino acid deletion, insertion, or addition.
  • the proline residue at position 483 of the wild-type NCgl2954 protein means an amino acid residue corresponding to the proline residue at position 483 in SEQ ID NO: 14, and one amino acid residue on the N-terminal side from position 483 Is deleted, it is assumed that the 482nd amino acid residue from the N-terminus is “the proline residue at position 483 of the wild-type NCgl2954 protein”.
  • the 484th amino acid residue from the N-terminal is “the proline residue at the 483 position of the wild-type NCgl2954 protein”.
  • amino acid residue in any amino acid sequence is “the amino acid residue corresponding to the amino acid residue at position X in SEQ ID NO: 14” is aligned with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 14
  • the alignment can be performed using, for example, known gene analysis software. Specific software includes DNA Solutions from Hitachi Solutions and GENETYX from Genetics (Elizabeth C. Tyler et al., Computers and Biomedical Research, 24 (1), 72-96, 1991; Barton GJ et) al., Journal of molecular biology, 198 (2), 327-37. 1987).
  • the amino acid residues into which the mutations shown in the above (1) to (7) are introduced may be conserved. It does not have to be stored. That is, for example, in the wild-type NCgl2954 protein, the “amino acid residue corresponding to the proline residue at position 483 of SEQ ID NO: 14” may not be a proline residue. Thus, for example, in the “mutation in which the amino acid residue corresponding to the proline residue at position 483 of SEQ ID NO: 14 is substituted with a leucine residue”, the amino acid residue at the corresponding position in the wild-type NCgl2954 protein is a proline residue.
  • the mutation is not limited to a mutation in which the proline residue is replaced with a leucine residue, but also includes a mutation in which the amino acid residue is replaced with a leucine residue when the amino acid residue at the position is not a proline residue. Good.
  • the mutant NCgl2954 gene can be obtained by modifying the wild-type NCgl2954 gene to have the mutation described above. Modification of DNA can be performed by a known method. Specifically, DNA modification can be performed by, for example, a site-specific mutagenesis method in which a target mutation is introduced into a target site of DNA. As site-directed mutagenesis, a method using PCR (Higuchi, R., 61, in PCR technology, rlErlich, H. A. Eds., Stockton press (1989); Carter, P., ethMeth. In Enzymol., 154, 382 (1987)) and methods using phage (Kramer, W. and Frits, H. J., Meth. In Enzymol., 154, 350 (1987); Kunkel, T. A. et al., Meth In Enzymol., 154, 367 (1987)). The mutant NCgl2954 gene can also be obtained by chemical synthesis.
  • Protein activity decreases means that the activity per cell of the protein is decreased compared to wild-type strains and parental unmodified strains, and the activity is completely lost. including. Specifically, “the activity of the protein is decreased” means that the number of molecules per cell of the protein is decreased and / or the function per molecule of the protein compared to the unmodified strain. Means that it is decreasing. In other words, “activity” in the case of “decrease in protein activity” means not only the catalytic activity of the protein but also the transcription amount (mRNA amount) or translation amount (protein amount) of the gene encoding the protein. May be. Note that “the number of molecules per cell of the protein is decreased” includes a case where the protein does not exist at all.
  • the function per molecule of the protein is reduced includes the case where the function per molecule of the protein is completely lost.
  • the activity of the protein is not particularly limited as long as it is lower than that of the non-modified strain. For example, it is 50% or less, 20% or less, 10% or less, 5% or less, or 0, compared to the non-modified strain. %.
  • Modification that decreases the activity of the protein can be achieved, for example, by decreasing the expression of the gene encoding the protein.
  • the modification that decreases the activity of the protein can be achieved, for example, by destroying a gene encoding the protein.
  • the modification that decreases the activity of the protein may be performed by, for example, a mutation treatment. The method for reducing gene expression, the method for destroying the gene, and the mutation treatment are all as described above.
  • all of the plurality of subunits may be modified or only a part may be modified as long as the activity of the protein decreases as a result. . That is, for example, all of a plurality of genes encoding these subunits may be destroyed, or only a part of them may be destroyed.
  • all the activities of the plurality of isozymes may be reduced, or only a part of the activities may be reduced. That is, for example, all of a plurality of genes encoding these isozymes may be destroyed, or only a part of them may be destroyed.
  • the decrease in the activity of the protein can be confirmed by measuring the activity of the protein.
  • the decrease in the activity of the protein can also be confirmed by confirming that the expression of the gene encoding the protein has decreased or that the gene has been destroyed.
  • the above-described method for reducing the activity of a protein involves reducing the activity of any protein, for example, an enzyme that catalyzes a reaction that branches from the biosynthetic pathway of the target L-amino acid to produce a compound other than the target L-amino acid. , And can be used to reduce the expression of any gene, for example, a gene encoding any of these proteins.
  • Protein activity increases “means that the activity per cell of the protein is increased relative to unmodified strains such as wild strains and parental strains. Note that “increasing protein activity” is also referred to as “enhancing protein activity”. “Protein activity increases” specifically means that the number of molecules per cell of the protein is increased and / or the function per molecule of the protein compared to an unmodified strain. Is increasing. That is, “activity” in the case of “increasing protein activity” means not only the catalytic activity of the protein, but also the transcription amount (mRNA amount) or translation amount (protein amount) of the gene encoding the protein. May be.
  • Protein activity increases means not only to increase the activity of the protein in a strain that originally has the activity of the target protein, but also to the activity of the protein in a strain that does not originally have the activity of the target protein. Including granting. Further, as long as the activity of the protein increases as a result, the activity of the target protein inherent in the host may be reduced or eliminated, and the activity of a suitable target protein may be imparted.
  • the activity of the protein is not particularly limited as long as it is increased compared to the non-modified strain.
  • the protein activity is increased 1.5 times or more, 2 times or more, or 3 times or more compared to the non-modified strain. Good.
  • the protein is generated by introducing a gene encoding the protein.
  • the protein has an enzymatic activity. It may be produced to the extent that it can be measured.
  • Modification that increases the activity of the protein is achieved, for example, by increasing the expression of the gene encoding the protein.
  • increasing gene expression is also referred to as “enhanced gene expression”.
  • the expression of the gene may be increased 1.5 times or more, 2 times or more, or 3 times or more, for example, as compared to the unmodified strain.
  • increasing gene expression means not only increasing the expression level of a target gene in a strain that originally expresses the target gene, but also in a strain that originally does not express the target gene. Including expressing a gene. That is, “increasing gene expression” includes, for example, introducing the gene into a strain that does not hold the target gene and expressing the gene.
  • An increase in gene expression can be achieved, for example, by increasing the copy number of the gene.
  • Increase in gene copy number can be achieved by introducing the gene into the host chromosome.
  • Introduction of a gene into a chromosome can be performed, for example, using homologous recombination (Miller I, J. H. Experiments in Molecular Genetics, 1972, Cold Spring Harbor Laboratory). Only one copy of the gene may be introduced, or two copies or more may be introduced.
  • multiple copies of a gene can be introduced into a chromosome by performing homologous recombination with a sequence having multiple copies on the chromosome as a target. Examples of sequences having many copies on a chromosome include repetitive DNA sequences (inverted DNA) and inverted repeats present at both ends of a transposon.
  • homologous recombination may be performed by targeting an appropriate sequence on a chromosome such as a gene unnecessary for production of the target substance.
  • Homologous recombination is, for example, the Red-driven integration method (Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97: 6640-6645 (2000) ), A method using a linear DNA, a method using a plasmid containing a temperature-sensitive replication origin, a method using a plasmid capable of conjugation transfer, a method using a suicide vector that does not have a replication origin and functions in a host, or a phage It can be performed by the transduction method used.
  • the gene can also be randomly introduced onto the chromosome using transposon or Mini-Mu (Japanese Patent Laid-Open No. 2-109985, US Pat. No. 5,882,888, EP805867B1).
  • An increase in the copy number of a gene can also be achieved by introducing a vector containing the gene into a host.
  • a DNA fragment containing a target gene can be linked to a vector that functions in the host to construct an expression vector for the gene, and the host can be transformed with the expression vector to increase the copy number of the gene. it can.
  • a DNA fragment containing a target gene can be obtained, for example, by PCR using a genomic DNA of a microorganism having the target gene as a template.
  • the vector a vector capable of autonomous replication in a host cell can be used.
  • the vector is preferably a multicopy vector.
  • the vector preferably has a marker such as an antibiotic resistance gene.
  • the vector may be, for example, a vector derived from a bacterial plasmid, a vector derived from a yeast plasmid, a vector derived from a bacteriophage, a cosmid, or a phagemid.
  • vectors capable of autonomous replication in coryneform bacteria include, for example, pHM1519 (Agric, Biol. Chem., 48, 2901-2903 (1984)); pAM330 (Agric. Biol.
  • plasmids having improved drug resistance genes plasmid pCRY30 described in JP-A-3-210184; plasmid pCRY21 described in JP-A-2-72876 and US Pat. No. 5,185,262.
  • the gene may be retained in the bacterium of the present invention so that it can be expressed.
  • the gene may be introduced so as to be expressed under the control of a promoter sequence that functions in the bacterium of the present invention.
  • the promoter may be a host-derived promoter or a heterologous promoter.
  • the promoter may be a native promoter of a gene to be introduced or a promoter of another gene. As the promoter, for example, a stronger promoter as described later may be used.
  • a transcription terminator can be placed downstream of the gene.
  • the terminator is not particularly limited as long as it functions in the bacterium of the present invention.
  • the terminator may be a host-derived terminator or a heterologous terminator.
  • the terminator may be a terminator specific to the gene to be introduced, or may be a terminator of another gene. Specific examples of the terminator include trpA terminator.
  • the vectors, promoters, and terminators that can be used in various microorganisms are described in detail in, for example, “Basic Course of Microbiology 8, Genetic Engineering, Kyoritsu Shuppan, 1987”, and these can be used.
  • each gene when two or more genes are introduced, each gene may be retained in the bacterium of the present invention so that it can be expressed. For example, all the genes may be held on a single expression vector, or all may be held on a chromosome. Moreover, each gene may be separately hold
  • the gene to be introduced is not particularly limited as long as it encodes a protein that functions in the host.
  • the introduced gene may be a host-derived gene or a heterologous gene.
  • the gene to be introduced can be obtained by PCR using, for example, a primer designed based on the base sequence of the gene, and using a genomic DNA of an organism having the gene or a plasmid carrying the gene as a template.
  • the introduced gene may be totally synthesized based on the base sequence of the same gene (Gene, 60 (1), 115-127 (1987)).
  • each subunit constituting the complex may be derived from one organism or two or more different organisms as long as the complex has the function of the target protein. That is, for example, genes derived from the same organism encoding a plurality of subunits may be introduced into the host, or genes derived from different organisms may be introduced into the host.
  • the increase in gene expression can be achieved by improving the transcription efficiency of the gene.
  • Improvement of gene transcription efficiency can be achieved, for example, by replacing a promoter of a gene on a chromosome with a stronger promoter.
  • strong promoter is meant a promoter that improves transcription of the gene over the native wild-type promoter.
  • More powerful promoters that can be used in coryneform bacteria include artificially redesigned P54-6 promoter (Appl. Microbiol.
  • the activity of the promoter can be increased by bringing the -35 and -10 regions in the promoter region closer to the consensus sequence (WO 00/18935).
  • the highly active promoter include various tac-like promoters (Katashkina JI et al. Russian Patent application 2006134574) and pnlp8 promoter (WO2010 / 027045). Methods for evaluating promoter strength and examples of strong promoters are described in Goldstein et al. (Prokaryotickpromoters in biotechnology. Biotechnol. Annu. Rev.,. 1, 105-128 (1995)).
  • the increase in gene expression can be achieved by improving the translation efficiency of the gene.
  • Improvement of gene translation efficiency can be achieved, for example, by replacing the Shine-Dalgarno (SD) sequence (also referred to as ribosome binding site (RBS)) of the gene on the chromosome with a stronger SD sequence.
  • SD Shine-Dalgarno
  • RBS ribosome binding site
  • a stronger SD sequence is meant an SD sequence in which the translation of mRNA is improved over the originally existing wild-type SD sequence.
  • RBS of gene 10 derived from phage T7 can be mentioned (Olins P. O. et al, Gene, 1988, 73, 227-235).
  • substitution of several nucleotides in the spacer region between the RBS and the start codon, particularly the sequence immediately upstream of the start codon (5'-UTR), or insertion or deletion contributes to mRNA stability and translation efficiency. It is known to have a great influence, and the translation efficiency of a gene can be improved by modifying them.
  • These expression control regions can be modified by, for example, a method using a temperature-sensitive vector or a Red driven integration method (WO2005 / 010175).
  • Improvement of gene translation efficiency can also be achieved, for example, by codon modification.
  • Escherichia coli, etc. there is a clear codon bias among the 61 amino acid codons found in the population of mRNA molecules, and the abundance of a tRNA seems to be directly proportional to the frequency of use of the corresponding codon. (Kane, JF, Curr. Opin. Biotechnol., 6 (5), 494-500 (1995)). That is, if a large amount of mRNA containing an excessive rare codon is present, translation problems may occur. Recent studies suggest that, inter alia, clusters of AGG / AGA, CUA, AUA, CGA, or CCC codons can reduce both the amount and quality of the synthesized protein.
  • Codon substitution can be performed, for example, by a site-specific mutagenesis method in which a target mutation is introduced into a target site of DNA.
  • site-directed mutagenesis a method using PCR (Higuchi, R., 61, in PCR technology, rlErlich, H. A. Eds., Stockton press (1989); Carter, P., ethMeth. In Enzymol., 154, 382 (1987)) and methods using phage (Kramer, W.
  • the increase in gene expression can be achieved by amplifying a regulator that increases gene expression or by deleting or weakening a regulator that decreases gene expression.
  • the modification that increases the activity of the protein can be achieved, for example, by enhancing the specific activity of the protein.
  • Specific activity enhancement also includes the reduction and elimination of feedback inhibition.
  • Proteins with enhanced specific activity can be obtained by searching for various organisms, for example.
  • a highly active protein may be obtained by introducing a mutation into a conventional protein.
  • the introduced mutation may be, for example, a substitution, deletion, insertion or addition of one or several amino acids at one or several positions of the protein. Mutation can be introduced by, for example, the site-specific mutation method as described above. Moreover, you may introduce
  • Mutation treatments include X-ray irradiation, UV irradiation, and N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine (MNNG), ethylmethanesulfonate (EMS), and methylmethanesulfonate (MMS). ) And the like.
  • DNA may be directly treated with hydroxylamine in vitro to induce random mutations.
  • the enhancement of specific activity may be used alone or in any combination with the above-described method for enhancing gene expression.
  • the method of transformation is not particularly limited, and a conventionally known method can be used.
  • recipient cells are treated with calcium chloride to increase DNA permeability (Mandel, M. and Higa, A., J. Mol. Biol. 1970, 53, 159-162) and methods for introducing competent cells from proliferating cells and introducing DNA as reported for Bacillus subtilis (Duncan, C. H., Wilson, G. A. and Young, F. E .., 1997. Gene 1: 153-167) can be used.
  • DNA-receptive cells such as those known for Bacillus subtilis, actinomycetes, and yeast, can be made into protoplasts or spheroplasts that readily incorporate recombinant DNA into recombinant DNA.
  • Introduction method (Chang, S. and Choen, SN, 1979. Mol. Gen. Genet. 168: 111-115; Bibb, M. J., Ward, J. M. and Hopwood, O. A. 1978. Nature 274: 398-400; Hinnen, A., Hicks, J. B. and Fink, G. R. 1978. Proc. Natl.Acad. Sci. USA 75: 1929-1933) can also be applied.
  • an electric pulse method Japanese Patent Laid-Open No. 2-207791 as reported for coryneform bacteria can also be used.
  • the increase in protein activity can be confirmed by measuring the activity of the protein.
  • the increase in protein activity can also be confirmed by confirming that the expression of the gene encoding the protein has increased.
  • An increase in gene expression can be confirmed by confirming that the transcription amount of the gene has increased, or by confirming that the amount of protein expressed from the gene has increased.
  • the transcription amount of the gene has increased by comparing the amount of mRNA transcribed from the gene with an unmodified strain such as a wild strain or a parent strain.
  • Methods for assessing the amount of mRNA include Northern hybridization, RT-PCR, etc. ), 2001).
  • the amount of mRNA may be increased by, for example, 1.5 times or more, 2 times or more, or 3 times or more, compared to the unmodified strain.
  • the amount of protein may be increased by, for example, 1.5 times or more, 2 times or more, or 3 times or more, compared to the unmodified strain.
  • the above-described technique for increasing the activity of a protein can be used for enhancing the activity of an arbitrary protein, such as an L-amino acid biosynthetic enzyme, or for enhancing the expression of an arbitrary gene, such as a gene encoding the arbitrary protein.
  • the method of the present invention comprises culturing the bacterium of the present invention in a medium containing xylose and cultivating the target substance in the medium or in the microbial cells of the bacterium. And producing the target substance, and collecting the target substance from the medium or cells.
  • one kind of target substance may be produced, or two or more kinds of target substances may be produced.
  • the medium to be used is not particularly limited as long as it contains xylose and the bacteria of the present invention can grow and the target substance is produced.
  • a normal medium used for culturing microorganisms such as bacteria can be used.
  • the medium may contain, in addition to xylose, a component selected from a carbon source, a nitrogen source, a phosphate source, a sulfur source, and other various organic components and inorganic components as necessary.
  • the type and concentration of the medium component may be appropriately set according to various conditions such as the type of bacteria used and the type of target substance to be produced.
  • xylose pure xylose such as purified xylose may be used, or a mixture containing xylose and other components may be used.
  • a mixture includes a hydrolyzate of plant biomass.
  • the plant biomass is not particularly limited as long as it contains xylose as a constituent sugar.
  • plant biomass include woody biomass and herbaceous biomass.
  • Specific examples of plant biomass include rice straw, rice husk, and sugarcane bagasse.
  • Hydrothermal decomposition treatment is preferable as a method for treating plant biomass.
  • the plant biomass may be subjected to a treatment such as a hydrothermal decomposition treatment as it is or after performing a pretreatment such as steaming or explosion as appropriate.
  • plant biomass may be pulverized to 5 mm or less and subjected to treatment such as hydrothermal decomposition treatment.
  • Hydrothermal decomposition can be performed using, for example, pressurized hot water of preferably 175 to 240 ° C., more preferably 200 to 230 ° C. Since the hemicellulose component is dissolved at about 140 ° C. or higher, the cellulose is dissolved at about 230 ° C. or higher, and the lignin component is dissolved at about 140 ° C. or higher, the temperature within the above range is preferable in order to sufficiently dissolve the hemicellulose component.
  • the hydrothermal decomposition treatment as described above can be performed by bringing plant biomass into contact with pressurized hot water. Such a process can be performed using an apparatus described in Japanese Patent No. 4436429, Japanese Patent No. 4524351, or Japanese Patent No. 4427583.
  • the hydrothermal decomposition treatment of the plant biomass the lignin component and the hemicellulose component are transferred from the plant biomass into the hot water, and the cellulose component remains as a solid content.
  • reaction pressure of the hydrothermal decomposition treatment is preferably 0.1 to 0.5 MPa higher than the saturated vapor pressure of water at each temperature so that the inside of the apparatus is in a state of pressurized hot water.
  • the reaction time is usually 20 minutes or less, preferably 3 to 15 minutes.
  • Saccharification of hemicellulose can be performed by enzymatic degradation using a saccharifying enzyme or sulfuric acid degradation using sulfuric acid. In the present invention, enzymatic degradation is preferred.
  • the saccharifying enzyme is not particularly limited as long as it decomposes hemicellulose to produce xylose.
  • Specific examples of the saccharifying enzyme include hemicellulase.
  • Hemicellulase is a general term for enzymes that catalyze the hydrolysis of glycosidic bonds contained in hemicellulose.
  • Hemicellulose refers to polysaccharides other than cellulose and pectin among the polysaccharides constituting the cell walls of land plant cells, and the main component of hemicellulose is xylan.
  • Xylan is a heteropolysaccharide in which a side chain such as arabinose is bonded to a main chain having xylose as a constituent sugar.
  • hemicellulase The main components of hemicellulase are endo-1,4- ⁇ -xylanase (EC 3.2.1.8) and ⁇ -1,4-xylosidase (EC 3.2.1.37), but other glucoside-bonded hydrolases are also included. It is. Examples of commercially available hemicellulases include Cellic Htec (Novozyme). Further, Spezyme® CP (derived from Genencor, Trichoderma® reesei), which is a cellulase, Novozyme® 188 (derived from Novozyme, Aspergillus® niger), and the like may be used as hemicellulases.
  • Spezyme® CP derived from Genencor, Trichoderma® reesei
  • Novozyme® 188 derived from Novozyme, Aspergillus® niger
  • hemicellulose When these enzymes are allowed to act on hemicellulose, xylose, arabinose and the like are produced. Moreover, not only hemicellulose but also cellulose may migrate or mix in hot water, and glucose may be generated by saccharification treatment. In the present invention, in addition to xylose, by-products such as glucose obtained by saccharification treatment may be used as a carbon source.
  • the enzyme reaction can be performed in an appropriate aqueous solvent such as water or a buffer solution.
  • the solvent used for the enzyme reaction may be, for example, water itself used for the hydrothermal treatment. What is necessary is just to set reaction conditions, such as reaction temperature and pH suitably according to the description of the description attached to the commercially available enzyme, or by preliminary experiment etc.
  • the reaction conditions when using the Spezyme®CP and Novozyme®188 include conditions of 45 to 60 ° C. and pH 4.5 to 6.5.
  • the amount of the enzyme may be, for example, usually 20 to 120 FPU (filter paper unit) per substrate solid amount.
  • the reaction time may usually be 24 to 144 hours, for example.
  • the enzyme reaction may be performed by standing or may be performed with stirring. Prior to the enzyme reaction, pretreatment such as delignification or partial degradation of hemicellulose may be performed.
  • the sulfuric acid concentration may be usually 0.1 to 5% by weight, preferably 1 to 4% by weight.
  • the decomposition temperature may be about 100 to 140 ° C, preferably about 120 ° C.
  • the decomposition time is usually 30 minutes to 3 hours, preferably around 1 hour. After decomposition, sulfuric acid can be removed by ion exchange resin treatment or the like.
  • the sugar solution containing xylose obtained by saccharification treatment may be used as a carbon source as it is or after being subjected to treatments such as concentration, dilution, drying, fractionation, and purification as appropriate.
  • concentration, dilution, drying, fractionation, and purification as appropriate.
  • components such as xylose can be separated and purified from a sugar solution to a desired degree and used as a carbon source.
  • the sugar solution obtained by saccharification treatment may contain substances that inhibit the growth and metabolism of microorganisms.
  • an inhibitor is mainly a non-volatile substance having a molecular weight of 3000 or less other than sugar. Therefore, the sugar solution is preferably used as a carbon source after being subjected to a treatment for removing such an inhibitor.
  • the treatment for removing such an inhibitor include adsorbent treatment, gel filtration, and membrane treatment.
  • the sugar solution may be subjected to a treatment for removing the inhibitor as it is or after being concentrated or diluted as appropriate.
  • Examples of the adsorbent that can be used for the adsorbent treatment include activated carbon, ion exchange resin, synthetic adsorbent resin, zeolite, and silica gel.
  • the adsorbent is preferably one that selectively adsorbs the inhibitor as described above.
  • the adsorbent treatment can be performed by batch or using a column, but it is preferable to use a column. When performing in a batch, the adsorbent is put into a container containing the sugar solution, and then the adsorbent and the sugar solution are separated.
  • a sugar solution is allowed to flow through a column filled with an adsorbent, and a washing solution is allowed to flow through the column as necessary to collect a flow-through (non-adsorbed fraction).
  • the adsorbent treatment may be performed only once, or may be repeated twice or more times. Further, for the adsorbent treatment, one kind of adsorbent may be used, or two or more kinds of adsorbents may be used in combination.
  • the sugar solution from which the inhibitory substance has been removed may be used as a carbon source as it is or after being subjected to treatments such as concentration, dilution, drying, fractionation, and purification as appropriate.
  • various components generated by the saccharification treatment may be further isomerized or decomposed by a chemical reaction or an enzymatic reaction depending on the use.
  • xylose may or may not be used as sole carbon source. That is, in the method of the present invention, other carbon sources may be used in combination with xylose. Other carbon sources are not particularly limited as long as the bacteria of the present invention can be assimilated to produce a target substance.
  • sugars such as glucose, fructose, sucrose, lactose, galactose, arabinose, waste molasses, starch hydrolyzate, biomass hydrolyzate, acetic acid, fumaric acid, citric acid, Examples thereof include organic acids such as succinic acid and malic acid, alcohols such as glycerol, crude glycerol and ethanol, and fatty acids.
  • the ratio of xylose in the total carbon source is, for example, 5% by weight or more, 10% by weight or more, 20% by weight or more, preferably 30% by weight or more, more preferably 50% by weight. It may be above.
  • one type of carbon source may be used, or two or more types of carbon sources may be used in combination.
  • the concentration of the carbon source in the medium is not particularly limited as long as the bacterium of the present invention can grow and the target substance is produced.
  • the concentration of the carbon source in the medium is preferably as high as possible as long as the production of the target substance is not inhibited.
  • the initial concentration of the carbon source in the medium may be, for example, usually 1 to 30% (W / V), preferably 3 to 10% (W / V).
  • the nitrogen source include ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium chloride, and ammonium phosphate, organic nitrogen sources such as peptone, yeast extract, meat extract, and soybean protein degradation product, ammonia, and urea.
  • Ammonia gas or ammonia water used for pH adjustment may be used as a nitrogen source.
  • the nitrogen source one kind of nitrogen source may be used, or two or more kinds of nitrogen sources may be used in combination.
  • the phosphoric acid source examples include phosphates such as potassium dihydrogen phosphate and dipotassium hydrogen phosphate, and phosphate polymers such as pyrophosphoric acid.
  • phosphates such as potassium dihydrogen phosphate and dipotassium hydrogen phosphate
  • phosphate polymers such as pyrophosphoric acid.
  • the phosphoric acid source one type of phosphoric acid source may be used, or two or more types of phosphoric acid sources may be used in combination.
  • the sulfur source include inorganic sulfur compounds such as sulfate, thiosulfate, and sulfite, and sulfur-containing amino acids such as cysteine, cystine, and glutathione.
  • the sulfur source one kind of sulfur source may be used, or two or more kinds of sulfur sources may be used in combination.
  • organic and inorganic components include, for example, inorganic salts such as sodium chloride and potassium chloride; trace metals such as iron, manganese, magnesium and calcium; vitamin B1, vitamin B2, vitamin B6 and nicotine Examples include vitamins such as acid, nicotinamide, and vitamin B12; amino acids; nucleic acids; and organic components such as peptone, casamino acid, yeast extract, and soybean protein degradation products containing these.
  • inorganic salts such as sodium chloride and potassium chloride
  • trace metals such as iron, manganese, magnesium and calcium
  • vitamin B1, vitamin B2, vitamin B6 and nicotine include vitamins such as acid, nicotinamide, and vitamin B12; amino acids; nucleic acids; and organic components such as peptone, casamino acid, yeast extract, and soybean protein degradation products containing these.
  • vitamins such as acid, nicotinamide, and vitamin B12
  • amino acids amino acids
  • nucleic acids amino acids
  • organic components such as peptone, casamino acid, yeast extract, and soybean
  • L-lysine producing bacteria often have an enhanced L-lysine biosynthetic pathway and weakened L-lysine resolution. Therefore, when culturing such L-lysine-producing bacteria, for example, one or more amino acids selected from L-threonine, L-homoserine, L-isoleucine, and L-methionine are supplemented to the medium. Is preferred.
  • L-glutamic acid when L-glutamic acid is produced by coryneform bacteria, it is preferable to limit the amount of biotin in the medium, or to add a surfactant or penicillin to the medium. In order to suppress foaming during culture, it is preferable to add an appropriate amount of a commercially available antifoaming agent to the medium.
  • Culture conditions are not particularly limited as long as the bacterium of the present invention can grow and the target substance is produced.
  • the culture can be performed, for example, under ordinary conditions used for culturing coryneform bacteria.
  • the culture conditions may be appropriately set according to various conditions such as the type of bacteria used and the type of target substance to be produced.
  • Cultivation can be performed using a liquid medium.
  • the culture medium of the bacterium of the present invention cultured in a solid medium such as an agar medium may be directly inoculated into a liquid medium, or the bacterium of the present invention seeded in a liquid medium is used as a liquid for main culture.
  • the medium may be inoculated. That is, the culture may be performed separately for seed culture and main culture. In that case, the culture conditions of the seed culture and the main culture may or may not be the same.
  • the amount of the bacterium of the present invention contained in the medium at the start of culture is not particularly limited.
  • a seed culture solution having an OD660 of 4 to 8 may be added at 0.1 to 30% by mass, preferably 1 to 10% by mass with respect to the medium for main culture at the start of culture.
  • Culture can be performed by batch culture, fed-batch culture, continuous culture, or a combination thereof.
  • the culture medium at the start of the culture is also referred to as “initial culture medium”.
  • a medium supplied to a culture system (fermentor) in fed-batch culture or continuous culture is also referred to as “fed-batch medium”.
  • supplying a feeding medium to a culture system in fed-batch culture or continuous culture is also referred to as “fed-batch”.
  • cultivation is performed by dividing into seed culture and main culture, for example, both seed culture and main culture may be performed by batch culture. Further, for example, seed culture may be performed by batch culture, and main culture may be performed by fed-batch culture or continuous culture.
  • each medium component may be contained in the initial medium, the fed-batch medium, or both.
  • the type of component contained in the initial culture medium may or may not be the same as the type of component contained in the fed-batch medium.
  • concentration of each component contained in a starting culture medium may be the same as the density
  • the xylose concentration in the medium is not particularly limited as long as the bacterium of the present invention can use xylose as a carbon source.
  • xylose may be contained in the medium at a concentration of 10 w / v% or less, preferably 5 w / v% or less, more preferably 2 w / v% or less.
  • Xylose may be contained in the medium at a concentration of 0.2 w / v% or more, preferably 0.5 w / v% or more, more preferably 1.0 w / v% or more, for example.
  • Xylose may be contained in the concentration range exemplified above in the initial culture medium, the feed medium, or both.
  • xylose When xylose is contained in the fed-batch medium, for example, xylose has a xylose concentration in the medium after fed-batch of 5 w / v% or less, preferably 2 w / v% or less, more preferably 1 w / v%. It may be contained in a fed-batch medium so that When xylose is contained in the fed-batch medium, the xylose has, for example, a xylose concentration in the medium after fed-batch of 0.01 w / v% or more, preferably 0.02 w / v% or more, more preferably You may contain in a feeding medium so that it may become 0.05 w / v% or more.
  • Xylose may be contained in the concentration range exemplified above when it is used only as a carbon source. In addition, xylose may be contained in the concentration range exemplified above when another carbon source is used in combination. In addition, when other carbon sources are used in combination, xylose may be contained in a concentration range in which the above exemplified concentration range is appropriately modified depending on, for example, the ratio of xylose in the total carbon source.
  • Xylose may or may not be contained in the medium in a certain concentration range during the entire culture period.
  • xylose may be deficient for some period. “Insufficient” means that the required amount is not satisfied.
  • the concentration in the medium may be zero.
  • Partial period refers to, for example, a period of 1% or less, a period of 5% or less, a period of 10% or less, a period of 20% or less, a period of 30% or less, or a period of the whole culture period, or It may be a period of 50% or less.
  • cultivation may mean the whole period of main culture, when culture
  • the concentration of various components such as xylose was measured by gas chromatography (Hashimoto, K. et al. 1996. Biosci. Biotechnol. Biochem. 70: 22-30) or HPLC (Lin, J. T. et al. 1998. J. Chromatogr. A. 808: 43-49).
  • the culture can be performed aerobically, for example.
  • the culture can be performed by aeration culture or shaking culture.
  • the oxygen concentration may be controlled to, for example, 5 to 50%, preferably about 10% of the saturated oxygen concentration.
  • the pH of the medium may be, for example, pH 3 to 10, preferably pH 4.0 to 9.5. During the culture, the pH of the medium can be adjusted as necessary.
  • the pH of the medium is adjusted using various alkaline or acidic substances such as ammonia gas, ammonia water, sodium carbonate, sodium bicarbonate, potassium carbonate, potassium bicarbonate, magnesium carbonate, sodium hydroxide, calcium hydroxide, magnesium hydroxide, etc. can do.
  • the culture temperature may be, for example, 20 to 45 ° C, preferably 25 ° C to 37 ° C.
  • the culture period may be, for example, 10 hours to 120 hours.
  • the culture may be continued, for example, until the carbon source in the medium is consumed or until the activity of the bacterium of the present invention is lost.
  • the target substance accumulates in the microbial cells and / or in the medium.
  • fed-batch culture or continuous culture fed-batch may be continued throughout the entire culture period or only during a part of the culture period.
  • multiple feedings may be performed intermittently.
  • the duration of one feeding is, for example, 30% or less, preferably 20% or less, more preferably 10% of the total time of the plurality of feedings.
  • the start and stop of fed batch may be repeated so that:
  • the second and subsequent feedings are controlled so that they are started when the carbon source in the fermentation medium is depleted in the immediately preceding feeding stop phase.
  • Carbon source depletion can be detected, for example, by increasing pH or increasing dissolved oxygen concentration.
  • extraction of the culture solution may be continued throughout the entire culture period, or may be continued only during a part of the culture period. Further, in continuous culture, a plurality of culture solutions may be extracted intermittently. Extraction and feeding of the culture solution may or may not be performed simultaneously. For example, the feeding may be performed after the culture solution is extracted, or the culture solution may be extracted after the feeding.
  • the amount of the culture solution to be withdrawn is preferably the same as the amount of the medium to be fed.
  • the “same amount” may be, for example, an amount of 93 to 107% with respect to the amount of medium to be fed.
  • the withdrawal may be started within 5 hours, preferably within 3 hours, more preferably within 1 hour after the start of fed-batch.
  • the culture solution In the case of intermittently pulling out the culture solution, it is preferable that when the target concentration of the target substance is reached, a part of the culture solution is withdrawn to recover the target substance, and the culture is continued by newly feeding the medium. .
  • the bacterial cells can be reused by recovering the L target substance from the extracted culture medium and recirculating the filtration residue containing the bacterial cells in the fermenter (French Patent 2669935 specification). ).
  • L-glutamic acid when producing L-glutamic acid, it is also possible to carry out the culture while precipitating L-glutamic acid in the medium using a liquid medium adjusted to conditions under which L-glutamic acid is precipitated.
  • the conditions under which L-glutamic acid precipitates are, for example, pH 5.0 to 3.0, preferably pH 4.9 to 3.5, more preferably pH 4.9 to 4.0, and particularly preferably around pH 4.7. (European Patent Application Publication No. 1078989).
  • cultivation may be performed at the said pH in the whole period, and may be performed at the said pH only for a part of period.
  • the “partial period” may be, for example, a period of 50% or more, 70% or more, 80% or more, 90% or more, 95% or more, or 99% or more of the entire culture period.
  • a method of fermenting basic amino acid using bicarbonate ion and / or carbonate ion as a main counter ion of basic amino acid may be used.
  • basic amino acids can be produced while reducing the amount of sulfate ions and / or chloride ions that have been conventionally used as counter ions for basic amino acids.
  • the formation of the target substance can be confirmed by a known method used for detection or identification of a compound. Examples of such a method include HPLC, LC / MS, GC / MS, and NMR. These methods can be used in appropriate combination.
  • the produced target substance can be recovered by a known method used for separation and purification of compounds. Examples of such a method include an ion exchange resin method, a membrane treatment method, a precipitation method, and a crystallization method. These methods can be used in appropriate combination.
  • the target substance accumulates in the microbial cells, for example, the microbial cells are crushed by ultrasonic waves, etc., and the target substance is removed from the supernatant obtained by removing the microbial cells by centrifugation by an ion exchange resin method or the like. It can be recovered.
  • the target substance to be recovered may be a free form, a salt thereof, or a mixture thereof.
  • Examples of the salt include sulfate, hydrochloride, carbonate, ammonium salt, sodium salt, and potassium salt.
  • L-lysine may be free L-lysine, L-lysine sulfate, L-lysine hydrochloride, L-lysine carbonate, or a mixture thereof.
  • L-glutamic acid may be free L-glutamic acid, sodium L-glutamate (MSG), ammonium L-glutamate (monoammonium L-glutamate), or a mixture thereof. .
  • a salt of inosinic acid specifically includes sodium inosinate (5′-IMP-disodium salt).
  • guanylic acid specifically, sodium guanylate (5′-GMP disodium salt) can be mentioned.
  • the target substance is precipitated in the medium, it can be recovered by centrifugation or filtration. Further, the target substance precipitated in the medium may be isolated together after crystallization of the target substance dissolved in the medium.
  • the target substance to be recovered may contain components other than the target substance, such as bacterial cells, medium components, moisture, and bacterial metabolic byproducts.
  • the purity of the collected target substance is, for example, 30% (w / w) or higher, 50% (w / w) or higher, 70% (w / w) or higher, 80% (w / w) or higher, 90% ( w / w) or more, or 95% (w / w) or more.
  • L-amino acid is L-glutamic acid
  • sodium L-glutamate crystals can be used as an umami seasoning.
  • the sodium L-glutamate crystals may be used as a seasoning by mixing with nucleic acids such as sodium guanylate and sodium inosinate having a similar umami taste.
  • the purine nucleotide can be produced using the purine nucleoside. That is, the present invention comprises culturing the bacterium of the present invention having purine nucleoside-producing ability in a medium, accumulating the purine nucleoside in the medium, phosphorylating the purine nucleoside to produce a purine nucleotide, and recovering the purine nucleotide To provide a method for producing purine nucleotides.
  • a purine nucleotide corresponding to the purine nucleoside to be used is generated. That is, for example, inosinic acid can be produced from inosine, guanylic acid from guanosine, xanthylic acid from xanthosine, and adenylic acid from adenosine.
  • inosinic acid can be produced from inosine, guanylic acid from guanosine, xanthylic acid from xanthosine, and adenylic acid from adenosine.
  • one kind of purine nucleotide may be produced, or two or more kinds of purine nucleotides may be produced.
  • Purine nucleoside may be subjected to phosphorylation while contained in the medium, or may be recovered from the medium and then subjected to phosphorylation.
  • the purine nucleoside may be subjected to phosphorylation after appropriate pretreatment. Examples of the pretreatment include purification, dilution, concentration, crystallization, drying, crushing, and dissolution. These pretreatments may be appropriately combined.
  • a culture solution containing purine nucleoside may be subjected to phosphorylation as it is or after being purified to a desired degree.
  • the method for phosphorylating purine nucleosides is not particularly limited. Phosphorylation can be performed, for example, by a known method.
  • Phosphorylation can be performed chemically, for example. Chemical phosphorylation can be performed using a phosphorylating agent such as phosphoryl chloride (POCl 3 ) (Yoshikawa et. Al., Studies of phosphorylation, III, Selective phosphorylation of unprotected nucleosides, Bull. Chem. Soc. Jpn., 1969, 42: 3505-3508).
  • a phosphorylating agent such as phosphoryl chloride (POCl 3 ) (Yoshikawa et. Al., Studies of phosphorylation, III, Selective phosphorylation of unprotected nucleosides, Bull. Chem. Soc. Jpn., 1969, 42: 3505-3508).
  • Phosphorylation can be performed using, for example, a microorganism or an enzyme. That is, purine nucleotides can be produced by allowing a microorganism having the ability to produce nucleoside-5′-phosphate esters to act on purine nucleosides and phosphate donors (Japanese Patent Laid-Open No. 07-231793). In addition, purine nucleotides can be generated by causing a phosphorylating enzyme to act on purine nucleosides and phosphate donors.
  • microorganisms having the ability to produce nucleoside-5′-phosphate esters include the following (Japanese Patent Application Laid-Open No. 07-231793). Escherichia blattae JCM 1650 Serratia ficaria ATCC 33105 Klebsiella planticola IFO 14939 (ATCC 33531) Klebsiella pneumoniae IFO 3318 (ATCC 8724) Klebsiella terrigena IFO 14941 (ATCC 33257) Morganella morganii IFO 3168 Enterobacter aerogenes IFO 12010 Enterobacter aerogenes IFO 13534 (ATCC 13048) Chromobacterium fluviatile IAM 13652 Chromobacterium violaceum IFO 12614 Cedecea lapagei JCM 1684 Cedecea davisiae JCM 1685 Cedecea neteri JCM 5909
  • the phosphorylase examples include phosphatase, nucleoside kinase, and nucleoside phosphotransferase.
  • the phosphorylase may or may not be purified. For example, phosphorylation of a culture of a microorganism producing phosphorylation enzyme, a culture supernatant separated from the culture, a cell separated from the culture, a treated product of the microorganism, a partially purified product thereof, etc. A fraction containing an enzyme may be used as a phosphorylating enzyme.
  • nucleoside kinases examples include inosine anosine kinase.
  • inosine anosine kinase As a method of using inosine anosine kinase, specifically, for example, a method for producing purine nucleotides using a bacterium belonging to the genus Escherichia into which a gene encoding inosine anosine kinase of Escherichia coli has been introduced (WO91 / 08286), And a method for producing purine nucleotides using Corynebacterium ammoniagenes into which a gene encoding inosine anosine kinase of Um acetylicum has been introduced (WO96 / 30501).
  • phosphatase examples include acid phosphatase.
  • the acid phosphatase examples include those disclosed in JP-A-2002-000289.
  • Preferred acid phosphatases include, for example, mutant acid phosphatases with increased affinity for nucleosides (Japanese Patent Laid-Open No. 10-201481), mutant acid phosphatases with decreased nucleotidase activity (WO96 / 37603), phosphate hydrolysis A mutant acid phosphatase having a reduced activity (JP 2001-245676 A) can be mentioned.
  • Examples of the phosphoric acid donor include polyphosphoric acid, phenyl phosphoric acid, acetyl phosphoric acid, carbamyl phosphoric acid, ATP, and dATP (deoxy ATP).
  • Examples of polyphosphoric acid include pyrophosphoric acid, tripolyphosphoric acid, trimetaphosphoric acid, tetrametaphosphoric acid, and hexametaphosphoric acid.
  • Any phosphoric acid donor may be a free form or a salt thereof, or a mixture thereof.
  • Examples of the salt include sodium salt and potassium salt.
  • the phosphate donor can be appropriately selected according to the type of microorganism used, the phosphorylating enzyme, and the like. Further, when ATP or dATP is used as a phosphate donor, these regeneration systems can be used in combination (WO91 / 08286, WO96 / 30501).
  • purine nucleotides can be confirmed by a known method used for detection or identification of compounds. Examples of such a method include HPLC, LC / MS, GC / MS, and NMR. These methods can be used in appropriate combination.
  • the recovered purine nucleotides can be collected by a known method used for separation and purification of compounds. Examples of such a method include an ion exchange resin method, a membrane treatment method, a precipitation method, and a crystallization method. These methods can be used in appropriate combination.
  • the recovered purine nucleotide may be a free form, a salt thereof, or a mixture thereof.
  • the recovered purine nucleotide may contain components such as a phosphorylating enzyme, a phosphate donor, a bacterial cell, a medium component, moisture, and a bacterial metabolic byproduct. Purine nucleotides may be purified to the desired extent.
  • Purine nucleotide purity is, for example, 30% (w / w) or higher, 50% (w / w) or higher, 70% (w / w) or higher, 80% (w / w) or higher, 90% (w / w) ) Or more, or 95% (w / w) or more.
  • Xylose-main medium Glucose-90 g / L glucose in the main medium replaced with 100 g / L xylose.
  • Glucose / xylose-main medium Glucose-90 g / L glucose in the main medium replaced with 45 g / L glucose and 45 g / L xylose.
  • pVK9Peftu_xylAB An expression plasmid pVK9Peftu_xylAB for E. coli-derived xylAB gene was constructed by the following procedure.
  • pVK9Peftu_xylAB includes a sequence in which an E. coli-derived xylAB gene is ligated downstream of a promoter sequence of C. glutamicum-derived elongation factor Tu (EF-Tu) gene tuf (W02008114721, hereinafter referred to as “Peftu”).
  • EF-Tu C. glutamicum-derived elongation factor Tu
  • DNA fragment containing xylAB gene by PCR using chromosomal DNA of E. coli MG1655 as a template and primers xylA_SP (2) _4691-80-12 (SEQ ID NO: 1) and xylAB_ASP_4691-80-13 (SEQ ID NO: 2) (XylAB fragment) was obtained.
  • a DNA fragment (Peftu fragment) containing Peftu by PCR using the chromosomal DNA of C. glutamicum ATCC13869 strain as a template and primers EFTU_SP_4691-80-1 (SEQ ID NO: 3) and EFTU_ASP_4691-80-2 (SEQ ID NO: 4) The PCR reaction was performed using PrimeSTAR
  • the xylAB fragment and the Peftu fragment obtained as described above were mixed with XVKI-treated pVK9 (JP 2007-97573, US Patent Application Publication No. 20050196846), and Clontech In-Fusion HD Cloning Kit (Takara Bio Inc.) After the in-fusion reaction was performed according to the protocol attached to the kit, E. coli JM109 was transformed with this reaction solution. The transformant was selected by culturing overnight at 37 ° C. on an LB agar medium (containing 40 mg / L kanamycin). The target plasmid pVK9Peftu_xylAB was obtained from the obtained transformant.
  • the nucleotide sequences of the cloned EF-Tu promoter (Peftu) and xylAB gene are shown in SEQ ID NOs: 9 and 10, respectively.
  • C. glutamicum imparted with xylose utilization ability in a xylose minimal medium C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB strain imparted with xylose utilization as described above is the only carbon source. The cells were cultured in a minimal medium (xylose minimal medium).
  • Fig. 1 shows the growth of each medium. Up to about 40 hours after the start of the culture, a tendency was observed that the growth rate of the cells was lower in the medium having a lower xylose concentration. However, in the 0.25% (w / v) xylose minimal medium having the lowest xylose concentration, almost no growth of the bacterial cells was observed until about 40 hours after the start of the culture, but the cells rapidly grew thereafter.
  • the culture solution obtained by culturing in 0.25% (w / v) xylose minimal medium in (3) above for 60 hours -Spread on Dex agar medium (containing 25 mg / L kanamycin) and cultured overnight at 31.5 ° C to form colonies. The obtained colonies were scraped off and re-planted on CM-Dex agar medium (containing 25 mg / L kanamycin) to obtain a single clone.
  • NCgl2954 gene deficient strain of C. glutamicum (6-1) Construction of NCgl2954 gene deficient plasmid pBS4S ⁇ NCgl2954 NCgl2954 gene deficient plasmid pBS4S ⁇ NCgl2954 was prepared as follows.
  • PCR was performed using the chromosomal DNA of C. glutamicum ATCC13869 strain as a template and primers delta_2954_F1 (SEQ ID NO: 5) and delta_2954_MR (SEQ ID NO: 6) to amplify a DNA fragment containing the region upstream of the NCgl2954 gene.
  • PCR was performed using the chromosomal DNA of C. glutamicum ATCC13869 strain as a template and primers delta_2954_MF (SEQ ID NO: 7) and delta_2954_R1 (SEQ ID NO: 8) to amplify a DNA fragment containing a region downstream of the NCgl2954 gene.
  • PCR reaction was performed using PrimeSTAR HS DNA Polymerase according to the protocol attached to the enzyme.
  • the two DNA fragments obtained above are mixed with plasmid pBS4S (JP 2007-97573, US Patent Application Publication 20050196846) treated with XbaXI, and attached to the kit using ClontechlonIn-fusion HD Cloning Kit After performing the in-fusion reaction according to the protocol of E.coli DH5 ⁇ , this reaction solution was transformed. The transformant was selected by culturing overnight at 37 ° C. on an LB agar medium (containing 40 mg / L kanamycin). From the obtained transformant, plasmid pBS4S ⁇ NCgl2954 in which the upstream and downstream sequences of the NCgl2954 gene were inserted into pBS4S was obtained.
  • NCgl2954 gene-deficient strain C glutamicum ATCC13869 strain was transformed with pBS4S ⁇ NCgl2954 by electric pulse method, and cultured overnight at 31.5 ° C on CM-Dex agar medium (containing 25 mg / L kanamycin) As a result, a single-point recombinant in which pBS4S ⁇ NCgl2954 was integrated on the chromosome was obtained. The obtained one-point recombinant was planted on an S10 agar medium, and a two-point recombinant C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 strain lacking the NCgl2954 gene region was obtained.
  • NCgl2954 gene-deficient strain in xylose minimal medium
  • C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 strain was transformed with pVK9Peftu_xylAB, and the NCgl2954 gene-deficient strain to which xylose-assimilating ability was imparted ( C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB strain).
  • This strain was tested for growth in 0.25% (w / v), 0.5% (w / v), and 1.0% (w / v) xylose minimal media as in (3) above.
  • the NCgl2954 gene-deficient strain does not show a significant decrease in growth rate even in a low concentration xylose minimal medium, unlike the wild strain (C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB strain). (FIGS. 3 and 4). From the above, it was strongly suggested that the factor of the growth rate improvement in the xylose minimal medium in the XM strain was inactivation or weakening of the NCgl2954 gene. This verification revealed that deletion of the NCgl2954 gene improves xylose utilization.
  • NCgl2954 gene-deficient strain C. glutamicum ATCC13869 ⁇ NCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB strain
  • wild strain C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB strain
  • the glutamic acid fermentation test was performed using a jar fermenter. Each strain was cultured overnight at 31.5 ° C. on CM-Dex agar medium (containing 25 mg / L kanamycin). From the cultured agar medium, 1 cm square cells were scraped and inoculated into a jar fermenter into which 250 mL of seed medium had been inserted. The cells were cultured at a culture temperature of 31.5 ° C, pH 7.2 (adjusted by adding ammonia gas), an aeration rate of 250 mL / min, and a stirring rate of 700 rpm until the glucose in the medium was completely consumed.
  • the seed culture solution thus obtained is inoculated [10% (v / v)] into each main medium (glucose, xylose, and glucose / xylose) so that the final volume is 250 mL, and cultured.
  • the cells were cultured at a temperature of 31.5 ° C, pH 7.2 (adjusted by adding ammonia gas), an aeration rate of 250 mL / min, and a stirring rate of 700 rpm.
  • the culture solution was sampled at each time, and OD620 of the culture solution, glucose concentration, xylose concentration, and glutamate concentration of the culture supernatant were measured.
  • the OD620 of the culture solution was measured using U-2900 (Hitachi High-Technologies Corporation).
  • the glutamic acid concentration and the glucose concentration in the culture supernatant were measured using Biotech Analyzer AS-310 (Sakura S Eye Co., Ltd.).
  • the xylose concentration in the culture supernatant was measured using an HPLC system (pump L-7100 and autosampler L-7200 (Hitachi High-Technologies Corporation); column oven CO 705 (GL Sciences Inc.)).
  • HPLC analysis conditions are as follows: Column SHODEX (SUGAR-G and SUGAR SH1011 (Showa Denko KK)); Column temperature 50 ° C; Eluent H 2 O; Flow rate 1.0 mL / min; Detection RI Detector (Co., Ltd.) Hitachi High-Technologies).
  • C. glutamicum with the NXA pathway gene introduced can be obtained by transformation using plasmid pVK9Peftu_ccrNXA (WO2013069634 A1).
  • pVK9Peftu_ccrNXA includes a sequence in which the xylXABCD gene encoding the NXA pathway derived from C. crescentus CB15 (ATCC19089) is linked downstream of the C. glutamicum-derived EF-Tu promoter (Peftu).
  • L-glutamic acid is produced from xylose via the NXA pathway by introducing the yagF gene encoding xylonic acid dehydratase from E.
  • PCR was performed using the chromosomal DNA of C. glutamicum ATCC13869 as a template and primers xylB_F1 (SEQ ID NO: 27) and xylB_MR (SEQ ID NO: 28) to amplify a DNA fragment containing the region upstream of the xylB gene.
  • PCR was performed using the chromosomal DNA of C. glutamicum ATCC13869 as a template and using primers xylB_MF (SEQ ID NO: 29) and xylB_R1 (SEQ ID NO: 30) to amplify a DNA fragment containing a region downstream of the xylB gene.
  • PCR reaction was performed using PrimeSTAR HS DNA Polymerase according to the protocol attached to the enzyme.
  • the two DNA fragments obtained above are mixed with plasmid pBS4S (JP 2007-97573, US Patent Application Publication 20050196846) treated with XbaXI, and attached to the kit using ClontechlonIn-fusion HD Cloning Kit After performing an in-fusion reaction according to the protocol of E.coli DH5 ⁇ , this reaction solution was transformed. Transformants were selected by culturing overnight at 37 ° C. on LB (containing 40 mg / L kanamycin) agar medium. A plasmid was extracted from the obtained transformant, and a plasmid pBS4S ⁇ xylB in which the upstream and downstream sequences of the xylB gene were inserted into pBS4S was obtained. In pBS4S ⁇ xylB, an Xba I recognition sequence is inserted between the sequence upstream and downstream of the xylB gene.
  • PCR was performed using the chromosomal DNA of E. coli MG1655 strain as a template and primers PcspB_yagF_fw (SEQ ID NO: 31) and yagF_xylB_rv (SEQ ID NO: 32) to amplify a DNA fragment containing the yagF gene.
  • PCR was performed using the chromosomal DNA of C.
  • PcspB glutamicum ATCC13869 strain as a template and primers xylB_PcspB_fw (SEQ ID NO: 33) and PcspB_rv (SEQ ID NO: 34), and the promoter region of the cspB gene (hereinafter referred to as “PcspB”).
  • a DNA fragment containing was amplified. PCR reaction was performed using PrimeSTAR HS DNA Polymerase according to the protocol attached to the enzyme.
  • the two DNA fragments obtained above were mixed with XbapI-treated plasmid pBS4S ⁇ xylB, and an in-fusion reaction was performed using Clontech In-fusion HD Cloning Kit according to the protocol attached to the kit. E. coliEDH5 ⁇ was transformed with the solution. Transformants were selected by culturing overnight at 37 ° C. on LB (containing 40 mg / L kanamycin) agar medium. A plasmid was extracted from the obtained transformant to obtain a plasmid pBS4S ⁇ xylB_yagF in which a sequence in which the yagF gene was linked downstream of PcspB was inserted between the upstream sequence and the downstream sequence of the xylB gene.
  • the nucleotide sequences of the cloned cspB promoter (PcspB) and yagF gene are shown in SEQ ID NOs: 47 and 19, respectively.
  • ATCC13869 + D strain was transformed with pVK9Peftu_ccrNXA, and ATCC13869 + D / pVK9Peftu_ccrNXA strain into which the NXA pathway was introduced was obtained by selecting on CM-Dex (containing 25 mg / L kanamycin) agar medium.
  • the same operation as above was performed, and after obtaining the ATCC13869 ⁇ NCgl2954 + D strain in which the yagF gene was introduced on the chromosome, this strain was transformed with pVK9Peftu_ccrNXA to obtain ATCC13869 ⁇ NCgl2954 + D + / in which the NXA pathway was introduced. pVK9Peftu_ccrNXA strain was acquired.
  • the NCgl2954 gene-deficient strain improved the xylose consumption rate and the glutamate production rate compared with the strain having the NCgl2954 gene (FIG. 8). This indicates that deletion of the NCgl2954 gene improves glutamate productivity from xylose not only through the xylose isomerase and xylulokinase pathway but also through the NXA pathway. .
  • the ability of coryneform bacteria to assimilate xylose can be improved, and target substances such as L-amino acids and nucleic acids can be efficiently produced from raw materials containing xylose.
  • Sequence number 1 Primer xylA_SP (2) _4691-80-12 Sequence number 2: Primer xylAB_ASP_4691-80-13 Sequence number 3: Primer EFTU_SP_4691-80-1 SEQ ID NO: 4: Primer EFTU_ASP_4691-80-2 Sequence number 5: Primer delta_2954_F1 Sequence number 6: Primer delta_2954_MR Sequence number 7: Primer delta_2954_MF Sequence number 8: Primer delta_2954_R1 SEQ ID NO: 9: Base sequence of EF-Tu promoter (Peftu) SEQ ID NO: 10: Base sequence of xylose operon (xylAB operon) of E.
  • SEQ ID NO: 11 Amino acid sequence of XylA protein of E. coli k-12 MG1655 strain
  • SEQ ID NO: 12 Amino acid sequence of XylB protein of E. coli k-12 MG1655 strain
  • SEQ ID NO: 13 Base of NCgl2954 gene of C. glutamicum ATCC13869 strain
  • SEQ ID NO: 14 Amino acid sequence of protein encoded by NCgl2954 gene of C.
  • SEQ ID NO: 15 Nucleotide sequence of xylB gene of Sphingomonas elodea
  • SEQ ID NO: 16 Amino acid sequence of XylB protein of Sphingomonas elodea
  • SEQ ID NO: 17 Sphingomonas elodea
  • SEQ ID NO: 18 amino acid sequence of XylC protein of Sphingomonas elodea
  • SEQ ID NO: 19 base sequence of yagF gene of Escherichia coli K-12 MG1655 strain
  • 20 YagF protein of Escherichia coli K-12 MG1655 strain
  • SEQ ID NO: 22 XylX protein of Sphingomonas elodea Mino acid sequence
  • SEQ ID NO: 23 base sequence of ycbD gene of
  • glutamicum ATCC13869 strain SEQ ID NO: 26 C. glutamicum ATCC13869 Amino acid sequence of YggB protein of the strain SEQ ID NO: 27 to 34: Primer SEQ ID NO: 35: Nucleotide sequence of xylB gene of C. glutamicum ATCC13869 strain SEQ ID NO: 36: Amino acid sequence of XylB protein of C.

Abstract

目的物質の製造法を提供する。染色体上のNCgl2954遺伝子のコード領域および／または発現制御領域に変異が導入されたことによりキシロース資化性が向上した目的物質の生産能を有するコリネ型細菌をキシロースを含有する培地で培養し、該培地より目的物質を採取することにより、目的物質を製造する。

Description

目的物質の製造法
　本発明は、コリネ型細菌を用いたＬ－アミノ酸等の目的物質の製造法に関する。Ｌ－アミノ酸は、動物飼料用の添加物、調味料や飲食品の成分、又はアミノ酸輸液等として、産業上有用である。
　Ｌ－アミノ酸は、例えば、Ｌ－アミノ酸生産能を有する各種微生物を用いた発酵法により工業生産されている。発酵法によるＬ－アミノ酸の製造法としては、例えば、野生型微生物（野生株）を用いる方法、野生株から誘導された栄養要求株を用いる方法、野生株から種々の薬剤耐性変異株として誘導された代謝調節変異株を用いる方法、栄養要求株と代謝調節変異株の両方の性質を持った株を用いる方法が挙げられる。
　また、近年は、組換えＤＮＡ技術によりＬ－アミノ酸生産能を向上させた微生物がＬ－アミノ酸の製造に利用されている。微生物のＬ－アミノ酸生産能を向上させる方法としては、例えば、Ｌ－アミノ酸生合成系酵素をコードする遺伝子の発現を増強すること（特許文献１、特許文献２）やＬ－アミノ酸生合成系への炭素源の流入を増強すること（特許文献３）が挙げられる。
　従来、発酵法によるＬ－アミノ酸等の目的物質の工業生産においては、炭素源として、グルコース、フラクトース、スクロース、廃糖蜜、澱粉加水分解物等が使用されてきた。しかしながら、これらは多少高価であり、近年では、植物由来のバイオマス原料の使用も進められている。
　このようなバイオマス原料として、現在はスターチや油脂等の可食部原料が主に利用されているが、将来的には、セルロース、ヘミセルロース、リグニン等の非可食部原料の利用が望まれている。セルロースおよびヘミセルロースは、熱や酸などを用いる前処理行程、およびセルラーゼ等の酵素による糖化処理行程等を経て、５炭糖および６炭糖へと変換され、発酵の原料として用いることができる（特許文献４、５）。このような５炭糖および６炭糖の混合糖をアミノ酸発酵等の原料とした場合、エシェリヒア・コリは、グルコースを優先的に資化することが知られており、結果、二段階増殖（ジオキシー）を示したり、生育が遅延する現象が確認されている（非特許文献１、２）。
　エシェリヒア・コリにおいては、xylA遺伝子がコードするキシロースイソメラーゼおよびxylB遺伝子がコードするキシルロキナーゼによるキシロース資化経路が知られており、同経路を導入したエシェリヒア・コリやコリネバクテリウム・グルタミカムを用いてキシロースからＬ－アミノ酸を生産できることが知られている（非特許文献３、４、特許文献６、７）。また、キシロース資化経路としては、他にも、キシロン酸を経由してキシロースからα－ケトグルタル酸へ至る経路が知られており、同経路を導入した細菌を用いてキシロースからＬ－グルタミン酸等の目的物質を生産できることが知られている（特許文献８）。
　コリネバクテリウム・グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）のNCgl2954遺伝子は、転写因子をコードする遺伝子である。NCgl2954遺伝子とキシロース資化性との関連は報告されていない。
米国特許第5,168,056号明細書 米国特許第5,776,736号明細書 米国特許第5,906,925号明細書 特表平9-507386号公報 特表平11-506934号公報 欧州特許第1577396号明細書 国際公開第2013/105802号パンフレット 国際公開第2013/069634号パンフレット
Nichols N.N. et al., Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001 Jul; 56(1-2): 120-125 Gonzalez, R., Biotechnol. Prog. 2002 Jan-Feb; 18(1): 6-20 Tao H., et al., J. Bacteriol. 2001 May; 183(10): 2979-2988 Gopinath, V. et al., Appl. Microbiol. Biotechnol. 2011 Dec; 92(5): 985-96
　本発明は、コリネ型細菌のキシロース資化能を向上させる新規な技術を開発し、キシロースを含む原料から、効率よくＬ－アミノ酸や核酸等の目的物質を製造する方法を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、NCgl2954遺伝子に変異が導入されたコリネ型細菌およびNCgl2954遺伝子を欠失したコリネ型細菌が効率よくキシロースを資化し得ることを見出し、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は以下の通り例示できる。
［１］
　目的物質の生産能を有するコリネ型細菌をキシロースを含有する培地で培養し、目的物質を該培地中に生成蓄積すること、および該培地より目的物質を採取すること、を含む目的物質の製造法であって、
　前記細菌が、染色体上のNCgl2954遺伝子のコード領域および／または発現制御領域に変異が導入されたことにより、キシロース資化性が向上したことを特徴とする、方法。
［２］
　キシロース資化性の向上が、キシロース取り込み能の向上によるものである、前記方法。
［３］
　NCgl2954遺伝子の発現が弱化されることにより、または該遺伝子が破壊されることにより、キシロース資化性が向上した、前記方法。
［４］
　前記NCgl2954遺伝子が、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質をコードするＤＮＡである、前記方法：
（Ａ）配列番号１４に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号１４に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号１４に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有するタンパク質。
［５］
　前記変異が、下記（１）～（７）の変異から選択される１またはそれ以上の変異である、前記方法：
（１）配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基がプロリン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（２）配列番号１４の３３４位のシステイン残基に相当するアミノ酸残基がシステイン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（３）配列番号１４の３７７位のチロシン残基に相当するアミノ酸残基がチロシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（４）配列番号１４の３６５位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（５）配列番号１４の３６６位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（６）配列番号１４の３６７位のアラニン残基に相当するアミノ酸残基がアラニン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（７）配列番号１４の３６８位以降のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基が欠失する変異。
［６］
　前記（１）～（６）の変異が、それぞれ下記（１ａ）～（６ａ）の変異である、前記方法：
（１ａ）配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン残基に置換される変異；
（２ａ）配列番号１４の３３４位のシステイン残基に相当するアミノ酸残基がアルギニン残基に置換される変異；
（３ａ）配列番号１４の３７７位のチロシン残基に相当するアミノ酸残基がアスパラギン残基に置換される変異；
（４ａ）配列番号１４の３６５位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がセリン残基に置換される変異；
（５ａ）配列番号１４の３６６位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がアルギニン残基に置換される変異；
（６ａ）配列番号１４の３６７位のアラニン残基に相当するアミノ酸残基がフェニルアラニン残基に置換される変異。
［７］
　前記細菌が、さらに、キシロースイソメラーゼ及び／又はキシルロキナーゼの活性が増大するように改変されている、前記方法。
［８］
　前記キシロースイソメラーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号１１に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号１１に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロースイソメラーゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号１１に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロースイソメラーゼ活性を有するタンパク質。
［９］
　前記キシルロキナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号１２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号１２に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシルロキナーゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号１２に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシルロキナーゼ活性を有するタンパク質。
［１０］
　前記細菌が、さらに、キシロースデヒドロゲナーゼ、キシロノラクトナーゼ、キシロン酸デヒドラターゼ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ、及びα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼからなる群より選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように改変されている、前記方法。
［１１］
　前記キシロン酸デヒドラターゼ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ、及びα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼが、それぞれ、エシェリヒア属細菌、スフィンゴモナス属細菌、及びバチルス属細菌に由来するタンパク質である、前記方法。
［１２］
　前記キシロースデヒドロゲナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号１６または４２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号１６または４２に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号１６または４２に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
［１３］
　前記キシロノラクトナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号１８または４４に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号１８または４４に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロノラクトナーゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号１８または４４に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロノラクトナーゼ活性を有するタンパク質。
［１４］
　前記キシロン酸デヒドラターゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号２０または４６に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号２０または４６に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号２０または４６に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質。
［１５］
　前記２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号２２または３８に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号２２または３８に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号２２または３８に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質。
［１６］
　前記α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（Ａ）配列番号２４または４０に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
（Ｂ）配列番号２４または４０に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質；
（Ｃ）配列番号２４または４０に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
［１７］
　前記目的物質が、アミノ酸、核酸、およびペプチドからなる群より選択される物質である、前記方法。
［１８］
　前記目的物質が、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－アルギニン、およびＬ―リジンからなる群より選択されるアミノ酸である、前記方法。
［１９］
　前記目的物質が、イノシン、キサントシン、グアノシン、およびアデノシンからなる群より選択されるプリンヌクレオシドである、前記方法。
［２０］
　前記目的物質が、イノシン酸、キサンチル酸、およびグアニル酸からなる群より選択されるプリンヌクレオチドである、前記方法。
［２１］
　前記細菌が、コリネバクテリウム属細菌である、前記方法。
［２２］
　前記細菌が、コリネバクテリウム・グルタミカムである、前記方法。
キシロース培地におけるC. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株の増殖曲線を示す図。 キシロース培地におけるC. glutamicum XM株の増殖曲線を示す図。 キシロース培地におけるC. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株の増殖曲線を示す図。 キシロース培地における培養開始後40時間目までの最大比増殖速度を示す図。「WT」：C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株、「XM」：C. glutamicum XM株、「ΔNCgl2954」：C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株。 グルコース培地におけるグルタミン酸発酵の結果を示す図。（Ａ）培養液の濁度（OD620）、（Ｂ）培養上清中のグルコース濃度、（Ｃ）培養上清中のグルタミン酸濃度。「WT」：C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株、「ΔNCgl2954」：C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株。 キシロース培地におけるグルタミン酸発酵の結果を示す図。（Ａ）培養液の濁度（OD620）、（Ｂ）培養上清中のキシロース濃度、（Ｃ）培養上清中のグルタミン酸濃度。「WT」：C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株、「ΔNCgl2954」：C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株。 グルコース／キシロース培地におけるグルタミン酸発酵の結果を示す図。（Ａ）培養液の濁度（OD620）、（Ｂ）培養上清中のグルコース濃度、（Ｃ）培養上清中のキシロース濃度、（Ｄ）培養上清中のグルタミン酸濃度。「WT」：C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株、「ΔNCgl2954」：C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株。 キシロース培地でのグルタミン酸発酵の結果を示す図。（Ａ）培養液の濁度（OD620）、（Ｂ）培養上清中のキシロース濃度、（Ｃ）培養上清中のグルタミン酸濃度。「WT」：C. glutamicum ATCC13869+D / pVK9Peftu_NXA株、「ΔNCgl2954」：C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954+D / pVK9Peftu_NXA株。
　以下、本発明を詳細に説明する。
　本発明の方法は、目的物質の生産能を有するコリネ型細菌をキシロースを含有する培地で培養して目的物質を該培地中または該細菌の菌体内に生成蓄積すること、および該培地または菌体より目的物質を採取すること、を含むＬ－アミノ酸の製造法であって、前記細菌が、NCgl2954遺伝子に変異が導入されたことによりキシロース資化性が向上したことを特徴とする、方法である。同方法に用いられる細菌を、「本発明の細菌」ともいう。
＜１＞本発明の細菌
　本発明の細菌は、目的物質の生産能を有するコリネ型細菌であって、且つ、NCgl2954遺伝子に変異が導入されたことによりキシロース資化性が向上した細菌である。
＜１－１＞目的物質の生産能を有するコリネ型細菌
　本発明において、「目的物質の生産能を有する細菌」とは、培地で培養したときに、目的物質を生成し、回収できる程度に培地中または菌体内に蓄積する能力を有する細菌をいう。目的物質の生産能を有する細菌は、非改変株よりも多い量の目的物質を培地に蓄積することができる細菌であってよい。非改変株としては、野生株や親株が挙げられる。また、目的物質の生産能を有する細菌は、好ましくは０．５ｇ／Ｌ以上、より好ましくは１．０ｇ／Ｌ以上の量の目的物質を培地に蓄積することができる細菌であってもよい。
　目的物質は、コリネ型細菌を用いた発酵法により製造できるものであれば特に制限されない。目的物質としては、例えば、Ｌ－アミノ酸、核酸、およびタンパク質が挙げられる。また、目的物質としては、例えば、α－ケトグルタル酸およびその誘導体も挙げられる。本発明においては、本発明の細菌は、１種の目的物質の生産能を有していてもよく、２種またはそれ以上の目的物質の生産能を有していてもよい。
　Ｌ－アミノ酸としては、Ｌ－リジン、Ｌ－オルニチン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－ヒスチジン、Ｌ－シトルリン等の塩基性アミノ酸、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－アラニン、Ｌ－バリン、Ｌ－ロイシン、グリシン等の脂肪族アミノ酸、Ｌ－スレオニン、Ｌ－セリン等のヒドロキシモノアミノカルボン酸であるアミノ酸、Ｌ－プロリン等の環式アミノ酸、Ｌ－フェニルアラニン、Ｌ－チロシン、Ｌ－トリプトファン等の芳香族アミノ酸、Ｌ－システイン、Ｌ－シスチン、Ｌ－メチオニン等の含硫アミノ酸、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アスパラギン酸等の酸性アミノ酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－アスパラギン等の側鎖にアミド基を持つアミノ酸が挙げられる。本発明の細菌は、１種のＬ－アミノ酸の生産能を有していてもよく、２種またはそれ以上のＬ－アミノ酸の生産能を有していてもよい。本発明において、「アミノ酸」という用語は、特記しない限り、Ｌ－アミノ酸を意味してよい。
　α－ケトグルタル酸およびその誘導体としては、α－ケトグルタル酸、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－シトルリン、Ｌ－オルニチン、Ｌ－プロリン、γ－アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）、プトレッシンが挙げられる。
　核酸としては、プリン系物質が挙げられる。プリン系物質としては、プリンヌクレオシドおよびプリンヌクレオチドが挙げられる。プリンヌクレオシドとしては、イノシン、グアノシン、キサントシン、およびアデノシンが挙げられる。プリンヌクレオチドとしては、プリンヌクレオシドの５’－リン酸エステルが挙げられる。プリンヌクレオシドの５’－リン酸エステルとしては、イノシン酸（イノシン－５’－リン酸エステル；ＩＭＰ）、グアニル酸（グアノシン－５’－リン酸エステル；ＧＭＰ）、キサンチル酸（キサントシン－５’－リン酸エステル；ＸＭＰ）、およびアデニル酸（アデノシン－５’－リン酸エステル；ＡＭＰ）が挙げられる。本発明の細菌は、１種のプリン系物質の生産能を有していてもよく、２種またはそれ以上のプリン系物質の生産能を有していてもよい。本発明の細菌は、例えば、１種またはそれ以上のプリンヌクレオシドの生産能を有していてもよい。本発明の細菌は、例えば、１種またはそれ以上のプリンヌクレオチドの生産能を有していてもよい。
　タンパク質は、コリネ型細菌を宿主として発現可能なものであれば特に制限されない。タンパク質は、本発明の細菌由来のタンパク質であってもよく、異種由来のタンパク質であってもよい。異種由来のタンパク質は、例えば、微生物由来のタンパク質であってもよく、植物由来のタンパク質であってもよく、動物由来のタンパク質であってもよく、ウィルス由来のタンパク質であってもよく、さらには人工的にアミノ酸配列をデザインしたタンパク質であってもよい。タンパク質は、単量体タンパク質であってもよく、多量体（multimer）タンパク質であってもよい。タンパク質は、天然で分泌性であるタンパク質であってもよく、天然では非分泌性であるタンパク質であってもよい。なお、「タンパク質」には、ペプチド、オリゴペプチド、またはポリペプチドと呼ばれる態様も含む。
　生産される目的物質は、フリー体、その塩、またはそれらの混合物であってよい。すなわち、本発明において、「目的物質」という用語は、特記しない限り、フリー体の目的物質、その塩、またはそれらの混合物を意味してよい。塩の例については後述する。
　コリネ型細菌としては、コリネバクテリウム（Corynebacterium）属、ブレビバクテリウム（Brevibacterium）属、およびミクロバクテリウム（Microbacterium）属等の属に属する細菌が挙げられる。
　コリネ型細菌としては、具体的には、下記のような種が挙げられる。
コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム（Corynebacterium acetoacidophilum）
コリネバクテリウム・アセトグルタミカム（Corynebacterium acetoglutamicum）
コリネバクテリウム・アルカノリティカム（Corynebacterium alkanolyticum）
コリネバクテリウム・カルナエ（Corynebacterium callunae）
コリネバクテリウム・グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）
コリネバクテリウム・リリウム（Corynebacterium lilium）
コリネバクテリウム・メラセコーラ（Corynebacterium melassecola）
コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス（コリネバクテリウム・エフィシエンス）（Corynebacterium thermoaminogenes (Corynebacterium efficiens)）
コリネバクテリウム・ハーキュリス（Corynebacterium herculis）
ブレビバクテリウム・ディバリカタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）（Brevibacterium divaricatum (Corynebacterium glutamicum)）
ブレビバクテリウム・フラバム（コリネバクテリウム・グルタミカム）（Brevibacterium flavum (Corynebacterium glutamicum)）
ブレビバクテリウム・イマリオフィラム（Brevibacterium immariophilum）
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）（Brevibacterium lactofermentum (Corynebacterium glutamicum)）
ブレビバクテリウム・ロゼウム（Brevibacterium roseum）
ブレビバクテリウム・サッカロリティカム（Brevibacterium saccharolyticum）
ブレビバクテリウム・チオゲニタリス（Brevibacterium thiogenitalis）
コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（コリネバクテリウム・スタティオニス）（Corynebacterium ammoniagenes (Corynebacterium stationis)）
ブレビバクテリウム・アルバム（Brevibacterium album）
ブレビバクテリウム・セリナム（Brevibacterium cerinum）
ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム（Microbacterium ammoniaphilum）
　コリネ型細菌としては、具体的には、下記のような菌株が挙げられる。
Corynebacterium acetoacidophilum ATCC 13870
Corynebacterium acetoglutamicum ATCC 15806
Corynebacterium alkanolyticum ATCC 21511
Corynebacterium callunae ATCC 15991
Corynebacterium glutamicum ATCC 13020, ATCC 13032, ATCC 13060，ATCC 13869，FERM BP-734
Corynebacterium lilium ATCC 15990
Corynebacterium melassecola ATCC 17965
Corynebacterium efficiens (Corynebacterium thermoaminogenes) AJ12340 (FERM BP-1539)
Corynebacterium herculis ATCC 13868
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium divaricatum) ATCC 14020
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) ATCC 13826, ATCC 14067, AJ12418 (FERM BP-2205)
Brevibacterium immariophilum ATCC 14068
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) ATCC 13869
Brevibacterium roseum ATCC 13825
Brevibacterium saccharolyticum ATCC 14066
Brevibacterium thiogenitalis ATCC 19240
Corynebacterium ammoniagenes (Corynebacterium stationis) ATCC 6871, ATCC 6872
Brevibacterium album ATCC 15111
Brevibacterium cerinum ATCC 15112
Microbacterium ammoniaphilum ATCC 15354
　なお、コリネバクテリウム属細菌には、従来ブレビバクテリウム属に分類されていたが、現在コリネバクテリウム属に統合された細菌（Int. J. Syst. Bacteriol., 41, 255(1991)）も含まれる。また、コリネバクテリウム・スタティオニスには、従来コリネバクテリウム・アンモニアゲネスに分類されていたが、16S rRNAの塩基配列解析等によりコリネバクテリウム・スタティオニスに再分類された細菌も含まれる（Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 60, 874-879(2010)）。
　これらの菌株は、例えば、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（住所12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20852 P.O. Box 1549, Manassas, VA 20108, United States of America）より分譲を受けることが出来る。すなわち各菌株に対応する登録番号が付与されており、この登録番号を利用して分譲を受けることが出来る（http://www.atcc.org/参照）。各菌株に対応する登録番号は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションのカタログに記載されている。
　本発明の細菌は、本来的に目的物質の生産能を有するものであってもよく、目的物質の生産能を有するように改変されたものであってもよい。目的物質の生産能を有する細菌は、例えば、上記のような細菌に目的物質の生産能を付与することにより、または、上記のような細菌の目的物質の生産能を増強することにより、取得できる。
＜１－１－１＞Ｌ－アミノ酸生産菌
　Ｌ－アミノ酸生産能の付与または増強は、従来、コリネ型細菌又はエシェリヒア属細菌等のアミノ酸生産菌の育種に採用されてきた方法により行うことができる（アミノ酸発酵、（株）学会出版センター、1986年5月30日初版発行、第７７～１００頁参照）。そのような方法としては、例えば、栄養要求性変異株の取得、Ｌ－アミノ酸のアナログ耐性株の取得、代謝制御変異株の取得、Ｌ－アミノ酸の生合成系酵素の活性が増強された組換え株の創製が挙げられる。Ｌ－アミノ酸生産菌の育種において、付与される栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質は、単独であってもよく、２種又は３種以上であってもよい。また、Ｌ－アミノ酸生産菌の育種において、活性が増強されるＬ－アミノ酸生合成系酵素も、単独であってもよく、２種又は３種以上であってもよい。さらに、栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質の付与と、生合成系酵素の活性の増強が組み合わされてもよい。
　Ｌ－アミノ酸生産能を有する栄養要求性変異株、アナログ耐性株、又は代謝制御変異株は、親株又は野生株を通常の変異処理に供し、得られた変異株の中から、栄養要求性、アナログ耐性、又は代謝制御変異を示し、且つＬ－アミノ酸生産能を有するものを選択することによって取得できる。通常の変異処理としては、Ｘ線や紫外線の照射、Ｎ－メチル－Ｎ’－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）、メチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。
　また、Ｌ－アミノ酸生産能の付与又は増強は、目的のＬ－アミノ酸の生合成に関与する酵素の活性を増強することによっても行うことができる。酵素活性の増強は、例えば、同酵素をコードする遺伝子の発現が増強するように細菌を改変することにより行うことができる。遺伝子の発現を増強する方法は、WO00/18935号パンフレット、欧州特許出願公開1010755号明細書等に記載されている。酵素活性を増強する詳細な手法については後述する。
　また、Ｌ－アミノ酸生産能の付与又は増強は、目的のＬ－アミノ酸の生合成経路から分岐して目的のＬ－アミノ酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性を低下させることによっても行うことができる。なお、ここでいう「目的のＬ－アミノ酸の生合成経路から分岐して目的のＬ－アミノ酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素」には、目的のアミノ酸の分解に関与する酵素も含まれる。酵素活性を低下させる手法については後述する。
　以下、Ｌ－アミノ酸生産菌、およびＬ－アミノ酸生産能を付与または増強する方法について具体的に例示する。なお、以下に例示するようなＬ－アミノ酸生産菌が有する性質およびＬ－アミノ酸生産能を付与または増強するための改変は、いずれも、単独で用いてもよく、適宜組み合わせて用いてもよい。
＜Ｌ－グルタミン酸生産菌＞
　Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン酸生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（gdhA）、グルタミンシンテターゼ（glnA）、グルタミン酸シンターゼ（gltBD）、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ（icdA）、アコニテートヒドラターゼ（acnA, acnB）、クエン酸シンターゼ（gltA）、メチルクエン酸シンターゼ（prpC）、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（ppc）、ピルビン酸カルボキシラーゼ（pyc）、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ（aceEF, lpdA）、ピルベートキナーゼ（pykA, pykF）、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ppsA）、エノラーゼ（eno）、ホスホグリセロムターゼ（pgmA, pgmI）、ホスホグリセリン酸キナーゼ（pgk）、グリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ（gapA）、トリオースリン酸イソメラーゼ（tpiA）、フルクトースビスリン酸アルドラーゼ（fbp）、ホスホフルクトキナーゼ（pfkA, pfkB）、グルコースリン酸イソメラーゼ（pgi）、６－ホスホグルコン酸デヒドラターゼ（edd）、２－ケト－３－デオキシ－６－ホスホグルコン酸アルドラーゼ（eda）、トランスヒドロゲナーゼが挙げられる。なお、カッコ内は、その酵素をコードする遺伝子の略記号の一例である（以下の記載においても同様）。これらの酵素の中では、例えば、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、クエン酸シンターゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、及びメチルクエン酸シンターゼから選択される１またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。
　グルタミン酸シンテターゼ遺伝子（gltBD）の発現が増大するように改変されたコリネ型細菌としては、WO99/07853に開示されたものが挙げられる。
　また、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン酸の生合成経路から分岐してＬ－グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、イソクエン酸リアーゼ（aceA）、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ（sucA, odhA）、ホスホトランスアセチラーゼ（pta）、酢酸キナーゼ（ack）、アセトヒドロキシ酸シンターゼ（ilvG）、アセト乳酸シンターゼ（ilvI）、ギ酸アセチルトランスフェラーゼ（pfl）、乳酸デヒドロゲナーゼ（ldh）、アルコールデヒドロゲナーゼ（adh）、グルタミン酸デカルボキシラーゼ（gadAB）、コハク酸デヒドロゲナーゼ（sdhABCD）、１－ピロリン－５－カルボキシレートデヒドロゲナーゼ（putA）が挙げられる。これらの酵素の中では、例えば、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を低下又は欠損させることが好ましい。
　α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下または欠損したコリネ型細菌、及びそれらの取得方法は、WO2008/075483に記載されている。α－ケトグルタレートデヒドロゲナーゼ活性が低下または欠損したコリネ型細菌として、具体的には、例えば、下記の株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) L30-2株 (特開2006-340603号明細書)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) ΔS株 (国際公開95/34672号パンフレット)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ12821 (FERM BP-4172；フランス特許公報9401748号明細書参照)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ12822 (FERM BP-4173；フランス特許公報9401748号明細書)
Corynebacterium glutamicum AJ12823 (FERM BP-4174；フランス特許公報9401748号明細書)
Corynebacterium glutamicum L30-2株 (特開2006-340603号)
　また、Ｌ－グルタミン酸生産菌又はそれを誘導するための親株としては、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ（sucA）活性およびコハク酸デヒドロゲナーゼ（sdh）活性の両方が低下または欠損した株も挙げられる（特開2010-041920号）。そのような株として、具体的には、例えば、Corynebacterium glutamicum ATCC14067のodhAsdhA二重欠損株（Corynebacterium glutamicum 8L3GΔSDH株）が挙げられる（特開2010-041920号）。
　また、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｄ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼ及び／又はフルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼの活性が増大するように細菌を改変する方法も挙げられる（特表2008-509661）。Ｄ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼ活性及びフルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼ活性はいずれか一方を増強してもよいし、両方を増強してもよい。なお、本明細書ではＤ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼとフルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼをまとめてホスホケトラーゼと呼ぶことがある。
　Ｄ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼ活性とは、リン酸を消費して、キシルロース－５－リン酸をグリセルアルデヒド－３－リン酸とアセチルリン酸に変換し、一分子のH2Oを放出する活性を意味する。この活性は、Goldberg, M.らの文献 (Methods Enzymol., 9,515-520 (1966)) またはL.Meileの文献 (J.Bacteriol. (2001) 183; 2929-2936) に記載の方法によって測定することができる。
　また、フルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼ活性とは、リン酸を消費して、フルクトース６－リン酸をエリスロース－４－リン酸とアセチルリン酸に変換し、一分子のH2Oを放出する活性を意味する。この活性は、Racker, Eの文献 (Methods Enzymol., 5, 276-280 (1962)) またはL.Meileの文献 (J.Bacteriol. (2001) 183; 2929-2936) に記載の方法によって測定することができる。
　また、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン酸排出遺伝子であるyhfK遺伝子（WO2005/085419）やybjL遺伝子（WO2008/133161）の発現を増強することも挙げられる。
　また、コリネ型細菌について、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与または増強する方法としては、有機酸アナログや呼吸阻害剤などへの耐性を付与する方法や、細胞壁合成阻害剤に対する感受性を付与する方法も挙げられる。そのような方法として、具体的には、例えば、モノフルオロ酢酸耐性を付与する方法（特開昭50-113209）、アデニン耐性またはチミン耐性を付与する方法（特開昭57-065198）、ウレアーゼを弱化させる方法（特開昭52-038088）、マロン酸耐性を付与する方法（特開昭52-038088）、ベンゾピロン類またはナフトキノン類への耐性を付与する方法（特開昭56-1889）、HOQNO耐性を付与する方法（特開昭56-140895）、α-ケトマロン酸耐性を付与する方法（特開昭57-2689）、グアニジン耐性を付与する方法（特開昭56-35981）、ペニシリンに対する感受性を付与する方法（特開平4-88994）などが挙げられる。
　このような耐性菌または感受性菌の具体例としては、下記のような菌株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ3949 (FERM BP-2632；特開昭50-113209参照)
Corynebacterium glutamicum AJ11628 (FERM P-5736；特開昭57-065198参照)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11355 (FERM P-5007；特開昭56-1889号公報参照)
Corynebacterium glutamicum AJ11368 (FERM P-5020；特開昭56-1889号公報参照)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11217 (FERM P-4318；特開昭57-2689号公報参照)
Corynebacterium glutamicum AJ11218 (FERM P-4319；特開昭57-2689号公報参照)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11564 (FERM P-5472；特開昭56-140895公報参照)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11439 (FERM P-5136；特開昭56-35981号公報参照)
Corynebacterium glutamicum H7684 (FERM BP-3004；特開平04-88994号公報参照)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ11426（FERM P-5123；特開平56-048890号公報参照）
Corynebacterium glutamicum AJ11440（FERM P-5137；特開平56-048890号公報参照）
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ11796（FERM P-6402；特開平58-158192号公報参照）
　また、コリネ型細菌について、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与または増強する方法としては、yggB遺伝子の発現を増強する方法やコード領域内に変異を導入した変異型yggB遺伝子を導入する方法も挙げられる（WO2006/070944）。yggB遺伝子は、メカノセンシティブチャンネル（mechanosensitive channel）をコードする遺伝子である。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のyggB遺伝子は、ＮＣＢＩデータベースにGenBank Accession No. NC_003450で登録されているゲノム配列中、1,336,091～1,337,692の配列の相補配列に相当し、NCgl1221とも呼ばれる。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のyggB遺伝子にコードされるYggBタンパク質は、GenBank accession No. NP_600492として登録されている。また、Corynebacterium glutamicum 2256 (ATCC 13869)のyggB遺伝子の塩基配列、及び同遺伝子がコードするYggBタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号２５および２６に示す。
　ここで用いる変異型yggB遺伝子としては、以下のような変異を有するyggB遺伝子を挙げることができる。なお、変異型yggB遺伝子にコードされるYggBタンパク質を変異型YggBタンパク質ともいう。また、当該変異を有さないyggB遺伝子および同遺伝子にコードされるYggBタンパク質を、それぞれ野生型yggB遺伝子および野生型YggBタンパク質ともいう。野生型YggBタンパク質としては、例えば配列番号２６に示すアミノ酸配列を有するタンパク質が挙げられる。
（１）C末端側変異
　C末端側変異は、配列番号２６のアミノ酸番号４１９～５３３の配列をコードする領域の塩基配列の一部に導入された変異である。C末端側変異は、上記領域の塩基配列中の少なくとも一部に変異が導入される限り特に制限されないが、インサーションシーケンス（以下、「IS」ともいう）やトランスポゾンが挿入されたものが好ましい。C末端側変異は、アミノ酸置換を伴うもの（ミスセンス変異）や、上記IS等の挿入によってフレームシフト変異が導入されたもの、ナンセンス変異が導入されたものの何れでもよい。
　C末端側変異としては、例えば、野生型YggBタンパク質の419位のバリン残基をコードする箇所に塩基配列が挿入される変異（2A-1型変異）が挙げられる。2A-1型変異は、例えば、野生型YggBタンパク質の419～533位のアミノ酸残基の一部または全部の欠失または置換を引き起こすものであってよい。2A-1型変異を有する変異型yggB遺伝子として、具体的には、例えば、配列番号２５の1255位の「G」の次にISが挿入され、元の野生型YggBタンパク質（配列番号２６）よりも短い全長423アミノ残基の変異型YggBタンパク質をコードするyggB遺伝子が挙げられる（特開2007-222163）。
　また、C末端側変異としては、例えば、野生型YggBタンパク質の419～533位に存在するプロリン残基を他のアミノ酸に置換する変異も挙げられる。そのようなプロリン残基としては、野生型YggBタンパク質の424位、437位、453位、457位、462位、469位、484位、489位、497位、515位、529位、および533位のプロリン残基が挙げられる。
（２）膜貫通領域の変異
　yggB遺伝子がコードするYggBタンパク質は、５個の膜貫通領域を有していると推測されている。配列番号２６の野生型YggBタンパク質のアミノ酸配列において、膜貫通領域はそれぞれ、アミノ酸番号１～２３（第１膜貫通領域）、２５～４７（第２膜貫通領域）、６２～８４（第３膜貫通領域）、８６～１０８（第４膜貫通領域）、１１０～１３２（第５膜貫通領域）の領域に相当する。yggB遺伝子は、これら膜貫通領域をコードする領域内に変異を有していてよい。膜貫通領域の変異は、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、付加、挿入又は逆位を含む変異であって、フレームシフト変異およびナンセンス変異を伴わないものが望ましい。膜貫通領域の変異としては、配列番号２６に示されるアミノ酸配列において、１４位のロイシン残基と１５位のトリプトファン残基間に１又は数個のアミノ酸（例えば、Cys-Ser-Leu）を挿入する変異、１００位のアラニン残基を他のアミノ酸残基（例えば、側鎖にヒドロキシル基を有するアミノ酸（Thr、Ser、またはTyr）、好ましくはThr）へ置換する変異、１１１位のアラニン残基を他のアミノ酸残基（例えば、側鎖にヒドロキシル基を有するアミノ酸（Thr、Ser、またはTyr）、好ましくはThr）へ置換する変異などが挙げられる。そのような膜貫通領域の変異を有する変異型yggB遺伝子として、具体的には、例えば、配列番号２５の44位の「G」の次にTTCATTGTGが挿入されたyggB遺伝子（A1型変異）、配列番号２５の298位の「G」が「A」に置換されたyggB遺伝子（19型変異）、配列番号２５の332位の「C」が「T」に置換されたyggB遺伝子（L30型変異）が挙げられる。
　なお、野生型YggBタンパク質が配列番号２６に示すアミノ酸配列以外のアミノ酸配列を有する場合、変異型yggB遺伝子は、配列番号２６における上記箇所のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基をコードする領域に変異を有していればよい。任意の野生型YggBタンパク質において、いずれのアミノ酸残基が「配列番号２６における上記箇所のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基」であるかは、当該野生型YggBタンパク質のアミノ酸配列と配列番号２６のアミノ酸配列とでアライメントを行うことにより決定できる。なお、「配列番号２６のアミノ酸番号Ｘ」とは、「配列番号２６のＸ位」と読み替えてよい。
＜Ｌ－グルタミン生産菌＞
　Ｌ－グルタミン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（gdhA）やグルタミンシンセターゼ（glnA）が挙げられる。なお、グルタミンシンセターゼの活性は、グルタミンアデニリルトランスフェラーゼ遺伝子（glnE）の破壊やPII制御タンパク質遺伝子（glnB）の破壊によって増強してもよい（EP1229121）。
　また、Ｌ－グルタミン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミンの生合成経路から分岐してＬ－グルタミン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、グルタミナーゼが挙げられる。
　Ｌ－グルタミン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（gdhA）および／またはグルタミンシンセターゼ（glnA）の活性を増強したコリネ型細菌（EP1229121, EP1424398）やグルタミナーゼ活性が低下したコリネ型細菌（特開2004-187684）が挙げられる。
　また、コリネ型細菌について、Ｌ－グルタミン生産能を付与または増強する方法としては、6-ジアゾ-5-オキソ-ノルロイシン耐性を付与する方法 (特開平3-232497)、プリンアナログ耐性及びメチオニンスルホキシド耐性を付与する方法 (特開昭61-202694)、α-ケトマレイン酸耐性を付与する方法 (特開昭56-151495)が挙げられる。Ｌ－グルタミン生産能を有するコリネ型細菌として、具体的には、例えば、以下の株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11573 (FERM P-5492；特開昭56-161495)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11576 (FERM BP-10381；特開昭56-161495)
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ12212 (FERM P-8123；特開昭61-202694)
＜Ｌ－プロリン生産菌＞
　Ｌ－プロリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－プロリン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、グルタミン酸－５－キナーゼ（proB）、γ‐グルタミル－リン酸レダクターゼ、ピロリン－５－カルボキシレートレダクターゼ（putA）が挙げられる。酵素活性の増強には、例えば、Ｌ－プロリンによるフィードバック阻害が解除されたグルタミン酸－５－キナーゼをコードするproB遺伝子（ドイツ特許第3127361号）が好適に利用できる。
　また、Ｌ－プロリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－プロリン分解に関与する酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、プロリンデヒドロゲナーゼやオルニチンアミノトランスフェラーゼが挙げられる。
＜Ｌ－スレオニン生産菌＞
　Ｌ－スレオニン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－スレオニン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、アスパルトキナーゼIII（lysC）、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（asd）、アスパルトキナーゼI（thrA）、ホモセリンキナーゼ（homoserine kinase）（thrB）、スレオニンシンターゼ（threonine synthase）（thrC）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（アスパラギン酸トランスアミナーゼ）（aspC）が挙げられる。これらの酵素の中では、アスパルトキナーゼIII、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ、アスパルトキナーゼI、ホモセリンキナーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、及びスレオニンシンターゼから選択される１またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。Ｌ－スレオニン生合成系遺伝子は、スレオニン分解が抑制された株に導入してもよい。
　Ｌ－スレオニン生合成系酵素の活性は、最終産物のＬ－スレオニンによって阻害される。従って、Ｌ－スレオニン生産菌を構築するためには、Ｌ－スレオニンによるフィードバック阻害を受けないようにＬ－スレオニン生合成系遺伝子を改変するのが好ましい。上記thrA、thrB、thrC遺伝子は、スレオニンオペロンを構成しており、スレオニンオペロンは、アテニュエーター構造を形成している。スレオニンオペロンの発現は、培養液中のイソロイシン、スレオニンに阻害を受け、アテニュエーションにより抑制される。スレオニンオペロンの発現の増強は、アテニュエーション領域のリーダー配列あるいはアテニュエーターを除去することにより達成できる（Lynn, S. P., Burton, W. S., Donohue, T. J., Gould, R. M., Gumport, R. I., and Gardner, J. F. J. Mol. Biol. 194:59-69 (1987); WO02/26993; WO2005/049808; WO2003/097839参照）。
　スレオニンオペロンの上流には固有のプロモーターが存在するが、同プロモーターを非天然のプロモーターに置換してもよい（WO98/04715号パンフレット参照）。また、スレオニン生合成関与遺伝子がラムダファ－ジのリプレッサーおよびプロモーターの制御下で発現するようにスレオニンオペロンを構築してもよい（欧州特許第0593792号明細書参照）。また、Ｌ－スレオニンによるフィードバック阻害を受けないように改変された細菌は、Ｌ－スレオニンアナログであるα-amino-β-hydroxyvaleric acid（AHV）に耐性な菌株を選抜することによっても取得できる。
　このようにＬ－スレオニンによるフィードバック阻害を受けないように改変されたスレオニンオペロンは、コピー数の上昇により、あるいは強力なプロモーターに連結されることにより、宿主内での発現量が向上しているのが好ましい。コピー数の上昇は、スレオニンオペロンを含むプラスミドを宿主に導入することにより達成できる。また、コピー数の上昇は、トランスポゾン、Muファ－ジ等を利用して、宿主のゲノム上にスレオニンオペロンを転移させることによっても達成できる。
　また、Ｌ－スレオニン生産能を付与または増強する方法としては、宿主にＬ－スレオニン耐性を付与する方法やＬ－ホモセリン耐性を付与する方法も挙げられる。耐性の付与は、例えば、Ｌ－スレオニンに耐性を付与する遺伝子、Ｌ－ホモセリンに耐性を付与する遺伝子の発現を強化することにより達成できる。耐性を付与する遺伝子としては、rhtA遺伝子（Res. Microbiol. 154:123－135 (2003)）、rhtB遺伝子（欧州特許出願公開第0994190号明細書）、rhtC遺伝子（欧州特許出願公開第1013765号明細書）、yfiK遺伝子、yeaS遺伝子（欧州特許出願公開第1016710号明細書）が挙げられる。また、宿主にＬ－スレオニン耐性を付与する方法は、欧州特許出願公開第0994190号明細書や国際公開第90/04636号パンフレットに記載の方法を参照出来る。
　E. coliのアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードするthrA遺伝子は明らかにされている(ヌクレオチド番号337～2799, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990)。thrA遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrL遺伝子とthrB遺伝子との間に位置する。Escherichia coliのホモセリンキナーゼをコードするthrB遺伝子は明らかにされている(ヌクレオチド番号2801～3733, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990)。thrB遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrA遺伝子とthrC遺伝子との間に位置する。E. coliのスレオニンシンターゼをコードするthrC遺伝子は明らかにされている(ヌクレオチド番号3734～5020, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990)。thrC遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrB遺伝子とyaaXオープンリーディングフレームとの間に位置する。また、スレオニンによるフィードバック阻害に耐性のアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする変異型thrA遺伝子と野生型thrBC遺伝子を含むthrA*BCオペロンは、スレオニン生産株E. coli VKPM B-3996に存在する周知のプラスミドpVIC40（米国特許第5,705,371号）から取得できる。
　E. coliのrhtA遺伝子は、グルタミン輸送系の要素をコードするglnHPQ オペロンに近いE. coli染色体の18分に存在する。rhtA遺伝子は、ORF1 (ybiF遺伝子, ヌクレオチド番号764～1651, GenBank accession number AAA218541, gi:440181)と同一であり、pexB遺伝子とompX遺伝子との間に位置する。ORF1によりコードされるタンパク質を発現するユニットは、rhtA遺伝子と呼ばれている(rht: resistant to homoserine and threonine（ホモセリン及びスレオニンに耐性）)。また、高濃度のスレオニン又はホモセリンへの耐性を付与するrhtA23変異が、ATG開始コドンに対して-1位のG→A置換であることが判明している(ABSTRACTS of the 17th International Congress of Biochemistry and Molecular Biology in conjugation with Annual Meeting of the American Society for Biochemistry and Molecular Biology, San Francisco, California August 24-29, 1997, abstract No. 457, EP 1013765 A)。
　E. coliのasd遺伝子は既に明らかにされており(ヌクレオチド番号3572511～3571408, GenBank accession NC_000913.1, gi:16131307)、その遺伝子の塩基配列に基づいて作製されたプライマーを用いるPCRにより取得できる(White, T.J. et al., Trends Genet., 5, 185 (1989)参照)。他の微生物のasd遺伝子も同様に得ることができる。
　また、E. coliのaspC遺伝子も既に明らかにされており(ヌクレオチド番号983742～984932, GenBank accession NC_000913.1, gi:16128895)、その遺伝子の塩基配列に基づいて作製されたプライマーを用いるPCRにより得ることができる。他の微生物のaspC遺伝子も同様に得ることができる。
　また、Ｌ－スレオニン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、Corynebacterium acetoacidophilum AJ12318 (FERM BP-1172) (米国特許第5,188,949号参照) が挙げられる。
＜Ｌ－リジン生産菌＞
　Ｌ－リジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－リジン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ジヒドロジピコリン酸シンターゼ（dihydrodipicolinate synthase）（dapA）、アスパルトキナーゼIII（aspartokinase III）（lysC）、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（dihydrodipicolinate reductase）（dapB）、ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（diaminopimelate decarboxylase）（lysA）、ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（diaminopimelate dehydrogenase）（ddh）（米国特許第6,040,160号）、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（phosphoenolpyruvate carboxylase）（ppc）、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（aspartate semialdehyde dehydrogenase）（asd）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（aspartate aminotransferase）（アスパラギン酸トランスアミナーゼ（aspartate transaminase））（aspC）、ジアミノピメリン酸エピメラーゼ（diaminopimelate epimerase）（dapF）、テトラヒドロジピコリン酸スクシニラーゼ（tetrahydrodipicolinate succinylase）（dapD）、スクシニルジアミノピメリン酸デアシラーゼ（succinyl-diaminopimelate deacylase）（dapE）、及びアスパルターゼ（aspartase）（aspA）（EP 1253195 A）が挙げられる。これらの酵素の中では、例えば、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ、ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、ジアミノピメリン酸エピメラーゼ、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ、テトラヒドロジピコリン酸スクシニラーゼ、及びスクシニルジアミノピメリン酸デアシラーゼから選択される１またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。また、Ｌ－リジン生産菌又はそれを誘導するための親株では、エネルギー効率に関与する遺伝子（cyo）（EP 1170376 A）、ニコチンアミドヌクレオチドトランスヒドロゲナーゼ（nicotinamide nucleotide transhydrogenase）をコードする遺伝子（pntAB）（米国特許第5,830,716号）、ybjE遺伝子（WO2005/073390）、またはこれらの組み合わせの発現レベルが増大していてもよい。アスパルトキナーゼIII（lysC）はＬ－リジンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除されたアスパルトキナーゼIIIをコードする変異型lysC遺伝子を利用してもよい（米国特許5,932,453号明細書）。また、ジヒドロジピコリン酸合成酵素（dapA）Ｌ－リジンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除されたジヒドロジピコリン酸合成酵素をコードする変異型dapA遺伝子を利用してもよい。
　また、Ｌ－リジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－リジンの生合成経路から分岐してＬ－リジン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ホモセリンデヒドロゲナーゼ（homoserine dehydrogenase）、リジンデカルボキシラーゼ（lysine decarboxylase）（米国特許第5,827,698号）、及びリンゴ酸酵素（malic enzyme）（WO2005/010175）が挙げられる。
　また、コリネ型細菌について、Ｌ－リジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、リジン排出系（lysE）の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる（WO97/23597）。Corynebacterium glutamicum ATCC 13032のlysE遺伝子は、NCBIデータベースにGenBank accession NC_006958 (VERSION NC_006958.1  GI:62388892)として登録されているゲノム配列中、1329712～1330413位の配列の相補配列に相当する。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のLysEタンパク質は、GenBank accession YP_225551 (YP_225551.1  GI:62390149)として登録されている。
　また、Ｌ－リジン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Ｌ－リジンアナログに耐性を有する変異株が挙げられる。Ｌ－リジンアナログは腸内細菌科の細菌やコリネ型細菌等の細菌の生育を阻害するが、この阻害は、Ｌ－リジンが培地に共存するときには完全にまたは部分的に解除される。Ｌ－リジンアナログとしては、特に制限されないが、オキサリジン、リジンヒドロキサメート、Ｓ－（２－アミノエチル）－Ｌ－システイン（AEC）、γ－メチルリジン、α－クロロカプロラクタムが挙げられる。これらのリジンアナログに対して耐性を有する変異株は、細菌を通常の人工変異処理に付すことによって得ることができる。
　また、Ｌ－リジン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、AEC耐性変異株（Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ11082（NRRL B-11470）株など；特公昭56-1914号公報、特公昭56-1915号公報、特公昭57-14157号公報、特公昭57-14158号公報、特公昭57-30474号公報、特公昭58-10075号公報、特公昭59-4993号公報、特公昭61-35840号公報、特公昭62-24074号公報、特公昭62-36673号公報、特公平5-11958号公報、特公平7-112437号公報、特公平7-112438号公報参照）；その生育にＬ－ホモセリン等のアミノ酸を必要とする変異株（特公昭48-28078号公報、特公昭56-6499号公報参照）；AECに耐性を示し、更にＬ－ロイシン、Ｌ－ホモセリン、Ｌ－プロリン、Ｌ－セリン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－アラニン、Ｌ－バリン等のアミノ酸を要求する変異株（米国特許第3708395号及び第3825472号明細書参照）；ＤＬ－α－アミノ－ε－カプロラクタム、α－アミノ－ラウリルラクタム、アスパラギン酸アナログ、スルファ剤、キノイド、Ｎ－ラウロイルロイシンに耐性を示す変異株；オキザロ酢酸デカルボキシラーゼ阻害剤または呼吸系酵素阻害剤に対する耐性を示す変異株（特開昭50-53588号公報、特開昭50-31093号公報、特開昭52-102498号公報、特開昭53-9394号公報、特開昭53-86089号公報、特開昭55-9783号公報、特開昭55-9759号公報、特開昭56-32995号公報、特開昭56-39778号公報、特公昭53-43591号公報、特公昭53-1833号公報）；イノシトールまたは酢酸を要求する変異株（特開昭55-9784号公報、特開昭56-8692号公報）；フルオロピルビン酸または34℃以上の温度に対して感受性を示す変異株（特開昭55-9783号公報、特開昭53-86090号公報）；エチレングリコールに耐性を示す変異株（米国特許第4411997号明細書）が挙げられる。
＜Ｌ－アルギニン生産菌＞
　Ｌ－アルギニン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－アルギニン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）、Ｎ－アセチルグルタミルリン酸レダクターゼ（argC）、オルニチンアセチルトランスフェラーゼ（argJ）、Ｎ－アセチルグルタミン酸キナーゼ（argB）、アセチルオルニチントランスアミナーゼ（argD）、アセチルオルニチンデアセチラーゼ（argE）オルニチンカルバモイルトランスフェラーゼ（argF）、アルギニノコハク酸シンターゼ（argG）、アルギニノコハク酸リアーゼ（argH）、カルバモイルリン酸シンターゼ（carAB）が挙げられる。Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）遺伝子としては、例えば、野生型の１５位～１９位に相当するアミノ酸残基が置換され、Ｌ－アルギニンによるフィードバック阻害が解除された変異型Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼをコードする遺伝子を用いると好適である（欧州出願公開1170361号明細書）。
　Ｌ－アルギニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アルギニンリプレッサーであるArgRを欠損した株（米国特許出願公開2002-0045223号）や細胞内のグルタミンシンテターゼ活性を上昇させた株（米国特許出願公開2005-0014236号公報）等のコリネ型細菌が挙げられる。
　また、Ｌ－アルギニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アミノ酸アナログなどへの耐性を有するコリネ型細菌の変異株も挙げられる。そのような株としては、例えば、２－チアゾールアラニン耐性に加えて、Ｌ－ヒスチジン、Ｌ－プロリン、Ｌ－スレオニン、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－メチオニン、またはＬ－トリプトファン要求性を有する株（特開昭54-44096号公報）；ケトマロン酸、フルオロマロン酸、又はモノフルオロ酢酸に耐性を有する株（特開昭57-18989号公報）；アルギニノールに耐性を有する株（特公昭62-24075号公報）；Ｘ－グアニジン（Ｘは脂肪鎖又はその誘導体）に耐性を有する株（特開平2-186995号公報）；アルギニンヒドロキサメート及び６－アザウラシルに耐性を有する株（特開昭57-150381号公報）が挙げられる。Ｌ－アルギニン生産能を有するコリネ型細菌の具体例としては、下記のような菌株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11169（FERM BP-6892）
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ12092（FERM BP-6906）
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11336（FERM BP-6893）
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ11345（FERM BP-6894）
Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ12430（FERM BP-2228）
＜Ｌ－シトルリン生産菌およびＬ－オルニチン生産菌＞
　Ｌ－シトルリンおよびＬ－オルニチンは、Ｌ－アルギニンと生合成経路が共通している。よって、Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）、Ｎ－アセチルグルタミルリン酸レダクターゼ（argC）、オルニチンアセチルトランスフェラーゼ（argJ）、N-アセチルグルタミン酸キナーゼ（argB）、アセチルオルニチントランスアミナーゼ（argD）、および／またはアセチルオルニチンデアセチラーゼ（argE）の酵素活性を上昇させることによって、Ｌ－シトルリンおよび／またはＬ－オルニチンの生産能を付与または増強することができる（国際公開2006-35831号パンフレット）。
＜Ｌ－ヒスチジン生産菌＞
　Ｌ－ヒスチジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－ヒスチジン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ＡＴＰホスホリボシルトランスフェラーゼ（hisG）、ホスホリボシル－ＡＭＰサイクロヒドロラーゼ（hisI）、ホスホリボシル－ＡＴＰピロホスホヒドロラーゼ（hisI）、ホスホリボシルフォルミミノ－５－アミノイミダゾールカルボキサミドリボタイドイソメラーゼ（hisA）、アミドトランスフェラーゼ（hisH）、ヒスチジノールフォスフェイトアミノトランスフェラーゼ（hisC）、ヒスチジノールフォスファターゼ（hisB）、ヒスチジノールデヒドロゲナーゼ（hisD）が挙げられる。
　これらの内、hisG及びhisBHAFIにコードされるＬ－ヒスチジン生合成系酵素は、Ｌ－ヒスチジンにより阻害されることが知られている。従って、Ｌ－ヒスチジン生産能は、例えば、ＡＴＰホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子（hisG）にフィードバック阻害への耐性を付与する変異を導入することにより、付与または増強させることができる(ロシア特許第2003677号及び第2119536号)。
＜Ｌ－システイン生産菌＞
　Ｌ－システイン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－システイン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、セリンアセチルトランスフェラーゼ（cysE）や３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ（serA）が挙げられる。セリンアセチルトランスフェラーゼ活性は、例えば、システインによるフィードバック阻害に耐性の変異型セリンアセチルトランスフェラーゼをコードする変異型cysE遺伝子を細菌に導入することにより増強できる。変異型セリンアセチルトランスフェラーゼは、例えば、特開平11-155571や米国特許公開第20050112731に開示されている。また、３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ活性は、例えば、セリンによるフィードバック阻害に耐性の変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼをコードする変異型serA遺伝子を細菌に導入することにより増強できる。変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼは、例えば、米国特許第6,180,373号に開示されている。
　また、Ｌ－システイン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－システインの生合成経路から分岐してＬ－システイン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、例えば、Ｌ－システインの分解に関与する酵素が挙げられる。Ｌ－システインの分解に関与する酵素としては、特に制限されないが、システインデスルフヒドラーゼ（aecD）（特開2002-233384）が挙げられる。
　また、Ｌ－システイン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－システイン排出系を増強することや硫酸塩／チオ硫酸塩輸送系を増強することも挙げられる。Ｌ－システイン排出系のタンパク質としては、ydeD遺伝子にコードされるタンパク質（特開2002-233384）、yfiK遺伝子にコードされるタンパク質（特開2004-49237）、emrAB、emrKY、yojIH、acrEF、bcr、およびcusAの各遺伝子にコードされる各タンパク質（特開2005-287333）、yeaS遺伝子にコードされるタンパク質（特開2010-187552）が挙げられる。硫酸塩／チオ硫酸塩輸送系のタンパク質としては、cysPTWAM遺伝子クラスターにコードされるタンパク質が挙げられる。
　また、Ｌ－システイン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、Ｌ－システインによるフィードバック阻害が低減されたセリンアセチルトランスフェラーゼを保持することにより、細胞内のセリンアセチルトランスフェラーゼ活性が上昇したコリネ型細菌（特開2002-233384）が挙げられる。
＜Ｌ－セリン生産菌＞
　Ｌ－セリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－セリン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる（特開平11-253187）。そのような酵素としては、特に制限されないが、３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ（serA）、ホスホセリントランスアミナーゼ（serC）、ホスホセリンホスファターゼ（serB）が挙げられる（特開平11-253187）。３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ活性は、例えば、セリンによるフィードバック阻害に耐性の変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼをコードする変異型serA遺伝子を細菌に導入することにより増強できる。変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼは、例えば、米国特許第6,180,373号に開示されている。
　Ｌ－セリン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、例えば、アザセリンまたはβ－（２－チエニル）－ＤＬ－アラニンに耐性を示し、かつＬ－セリン分解能を欠失したコリネ型細菌が挙げられる（特開平10-248588）。そのようなコリネ型細菌として、具体的には、例えば、アザセリンに耐性を示し、かつＬ－セリン分解能を欠失したCorynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ13324 (FERM P-16128) や、β－（２－チエニル）－ＤＬ－アラニンに耐性を示し、かつＬ－セリンの分解能を欠失したCorynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ13325 (FERM P-16129) が挙げられる（特開平10-248588）。
＜Ｌ－メチオニン生産菌＞
　Ｌ－メチオニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Ｌ－スレオニン要求株や、ノルロイシンに耐性を有する変異株が挙げられる（特開2000-139471）。また、Ｌ－メチオニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Ｌ－メチオニンによるフィードバック阻害に対して耐性をもつ変異型ホモセリントランスサクシニラーゼを保持する株も挙げられる（特開2000-139471、US20090029424）。なお、Ｌ－メチオニンはＬ－システインを中間体として生合成されるため、Ｌ－システインの生産能の向上によりＬ－メチオニンの生産能も向上させることができる（特開2000-139471、US20080311632）。
＜Ｌ－ロイシン生産菌＞
　Ｌ－ロイシン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－ロイシン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、leuABCDオペロンの遺伝子にコードされる酵素が挙げられる。また、酵素活性の増強には、例えば、Ｌ－ロイシンによるフィードバック阻害が解除されたイソプロピルマレートシンターゼをコードする変異leuA遺伝子(米国特許第6,403,342号)が好適に利用できる。
　Ｌ－ロイシン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、２－チアゾールアラニン及びβ－ハイドロキシロイシンに耐性で、且つイソロイシン及びメチオニン要求性である、Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ3718（FERM P-2516）が挙げられる。
＜Ｌ－イソロイシン生産菌＞
　Ｌ－イソロイシン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－イソロイシン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、スレオニンデアミナーゼやアセトヒドロキシ酸シンターゼが挙げられる（特開平2-458号, FR 0356739, 及び米国特許第5,998,178号）。
　Ｌ－イソロイシン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、分岐鎖アミノ酸排出タンパク質をコードするbrnE遺伝子を増幅したコリネ型細菌（特開2001-169788）、Ｌ－リジン生産菌とのプロトプラスト融合によりＬ－イソロイシン生産能を付与したコリネ型細菌（特開昭62-74293）、ホモセリンデヒドロゲナーゼを強化したコリネ型細菌（特開昭62-91193）、スレオニンハイドロキサメート耐性株（特開昭62-195293）、α-ケトマロン耐性株（特開昭61-15695）、メチルリジン耐性株（特開昭61-15696）、Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium flavum) AJ12149（FERM BP-759）（米国特許第4,656,135号）が挙げられる。
＜Ｌ－バリン生産菌＞
　Ｌ－バリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－バリン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ilvGMEDAオペロンやilvBNCオペロンの遺伝子にコードされる酵素が挙げられる。ilvBNはアセトヒドロキシ酸シンターゼを、ilvCはイソメロリダクターゼ（国際公開00/50624号）を、それぞれコードする。なお、ilvGMEDAオペロンおよびilvBNCオペロンは、Ｌ－バリン、Ｌ－イソロイシン、および／またはＬ－ロイシンによる発現抑制（アテニュエーション）を受ける。よって、酵素活性の増強のためには、アテニュエーションに必要な領域を除去または改変し、生成するＬ－バリンによる発現抑制を解除するのが好ましい。また、ilvA遺伝子がコードするスレオニンデアミナーゼは、Ｌ－イソロイシン生合成系の律速段階であるＬ－スレオニンから２－ケト酪酸への脱アミノ化反応を触媒する酵素である。よって、Ｌ－バリン生産のためには、ilvA遺伝子が破壊等され、スレオニンデアミナーゼ活性が減少しているのが好ましい。
　また、Ｌ－バリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－バリンの生合成経路から分岐してＬ－バリン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、Ｌ－ロイシン合成に関与するスレオニンデヒドラターゼやＤ－パントテン酸合成に関与する酵素が挙げられる（国際公開00/50624号）。
　Ｌ－バリン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アミノ酸アナログなどへの耐性を有する株が挙げられる。そのような株としては、例えば、Ｌ－イソロイシンおよびＬ－メチオニン要求性、ならびにＤ－リボース、プリンリボヌクレオシド、またはピリミジンリボヌクレオシドに耐性を有し、且つＬ－バリン生産能を有するコリネ型細菌株（FERM P-1841、FERM P-29、特公昭53-025034）、ポリケトイド類に耐性を有するコリネ型細菌株（FERM P-1763、FERM P-1764、特公平06-065314）、酢酸を唯一の炭素源とする培地でＬ－バリン耐性を示し、且つグルコースを唯一の炭素源とする培地でピルビン酸アナログ(フルオロピルビン酸等)に感受性を有するコリネ型細菌株（FERM BP-3006、FERM BP-3007、特許3006929号）が挙げられる。
＜Ｌ－アラニン生産菌＞
　Ｌ－アラニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、H+-ATPaseを欠失しているコリネ型細菌（Appl Microbiol Biotechnol. 2001 Nov;57(4):534-40）やアスパラギン酸β－デカルボキシラーゼ活性が増強されたコリネ型細菌（特開平07-163383）が挙げられる。
＜Ｌ－トリプトファン生産菌、Ｌ－フェニルアラニン生産菌、Ｌ－チロシン生産菌＞
　Ｌ－トリプトファン生産能、Ｌ－フェニルアラニン生産能、および／またはＬ－チロシン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－トリプトファン、Ｌ－フェニルアラニン、および／またはＬ－チロシンの生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。
　これらの芳香族アミノ酸に共通する生合成系酵素としては、特に制限されないが、３－デオキシ－Ｄ－アラビノヘプツロン酸－７－リン酸シンターゼ（aroG）、３－デヒドロキネートシンターゼ（aroB）、シキミ酸デヒドロゲナーゼ（aroE）、シキミ酸キナーゼ（aroL）、５－エノール酸ピルビルシキミ酸３－リン酸シンターゼ（aroA）、コリスミ酸シンターゼ（aroC）が挙げられる（欧州特許763127号）。これらの酵素をコードする遺伝子の発現はチロシンリプレッサー（tyrR）によって制御されており、tyrR遺伝子を欠損させることによって、これらの酵素の活性を増強してもよい（欧州特許763127号）。
　Ｌ－トリプトファン生合成系酵素としては、特に制限されないが、アントラニル酸シンターゼ（trpE）、トリプトファンシンターゼ（trpAB）、及びホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ（serA）が挙げられる。例えば、トリプトファンオペロンを含むＤＮＡを導入することにより、Ｌ－トリプトファン生産能を付与又は増強できる。トリプトファンシンターゼは、それぞれtrpA及びtrpB遺伝子によりコードされるα及びβサブユニットからなる。アントラニル酸シンターゼはＬ－トリプトファンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼはＬ－セリンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。さらに、マレートシンターゼ（aceB）、イソクエン酸リアーゼ（aceA）、およびイソクエン酸デヒドロゲナーゼキナーゼ／フォスファターゼ（aceK）からなるオペロン（aceオペロン）の発現を増大させることによりＬ－トリプトファン生産能を付与または増強してもよい(WO2005/103275)。
　Ｌ－フェニルアラニン生合成系酵素としては、特に制限されないが、コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドラターゼが挙げられる。コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドラターゼは、２機能酵素としてpheA遺伝子によってコードされている。コリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドラターゼはＬ－フェニルアラニンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。
　Ｌ－チロシン生合成系酵素としては、特に制限されないが、コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドロゲナーゼが挙げられる。コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドロゲナーゼは、２機能酵素としてtyrA遺伝子によってコードされている。コリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドロゲナーゼはＬ－チロシンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。
　Ｌ－トリプトファン、Ｌ－フェニルアラニン、および／またはＬ－チロシンの生産菌は、目的の芳香族アミノ酸以外の芳香族アミノ酸の生合成が低下するように改変されていてもよい。また、Ｌ－トリプトファン、Ｌ－フェニルアラニン、および／またはＬ－チロシンの生産菌は、副生物の取り込み系が増強されるように改変されていてもよい。副生物としては、目的の芳香族アミノ酸以外の芳香族アミノ酸が挙げられる。副生物の取り込み系をコードする遺伝子としては、例えば、Ｌ－トリプトファンの取り込み系をコードする遺伝子であるtnaBやmtr、Ｌ－フェニルアラニンの取り込み系をコードする遺伝子であるpheP、Ｌ－チロシンの取り込み系をコードする遺伝子であるtyrPが挙げられる（EP1484410）。
　Ｌ－トリプトファン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、サルファグアニジンに耐性のCorynebacterium glutamicum AJ12118（FERM BP-478 特許01681002号）、トリプトファンオペロンが導入された株（特開昭63240794号公報）、コリネ型細菌由来のシキミ酸キナーゼをコードする遺伝子が導入された株（特開01994749号公報）が挙げられる。
　Ｌ－フェニルアラニン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼまたはピルビン酸キナーゼ活性が低下したCorynebacterium glutamicum BPS-13株 (FERM BP-1777)、Corynebacterium glutamicum K77 (FERM BP-2062)、Corynebacterium glutamicum K78 (FERM BP-2063)（欧州特許公開公報331145号、特開平 02-303495号）、チロシン要求性株（特開平05-049489）が挙げられる。
　Ｌ－チロシン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、Corynebacterium glutamicum AJ11655 (FERM P-5836)（特公平2-6517）、Corynebacterium glutamicum (Brevibacterium lactofermentum) AJ12081 (FERM P-7249)（特開昭60-70093）が挙げられる。
　また、Ｌ－アミノ酸生産能を付与または増強する方法としては、例えば、細菌の細胞からＬ－アミノ酸を排出する活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。Ｌ－アミノ酸を排出する活性は、例えば、Ｌ－アミノ酸を排出するタンパク質をコードする遺伝子の発現を上昇させることにより、増大させることができる。各種アミノ酸を排出するタンパク質をコードする遺伝子としては、例えば、b2682遺伝子（ygaZ）、b2683遺伝子（ygaH）、b1242遺伝子（ychE）、b3434遺伝子（yhgN）が挙げられる（特開2002-300874号公報）。
　また、Ｌ－アミノ酸生産能を付与または増強する方法としては、例えば、糖代謝に関与するタンパク質やエネルギー代謝に関与するタンパク質の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。
　糖代謝に関与するタンパク質としては、糖の取り込みに関与するタンパク質や解糖系酵素が挙げられる。糖代謝に関与するタンパク質をコードする遺伝子としては、グルコース６－リン酸イソメラーゼ遺伝子（pgi；国際公開第01/02542号パンフレット）、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ遺伝子（pps；欧州出願公開877090号明細書）、ホスホエノ－ルピルビン酸カルボキシラ－ゼ遺伝子（ppc；国際公開95/06114号パンフレット)、ピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子（pyc；国際公開99/18228号パンフレット、欧州出願公開1092776号明細書）、ホスホグルコムターゼ遺伝子（pgm；国際公開03/04598号パンフレット）、フルクトース二リン酸アルドラーゼ遺伝子（pfkB, fbp；国際公開03/04664号パンフレット）、ピルビン酸キナーゼ遺伝子（pykF；国際公開03/008609号パンフレット）、トランスアルドラーゼ遺伝子（talB；国際公開03/008611号パンフレット）、フマラーゼ遺伝子（fum；国際公開01/02545号パンフレット）、non-PTSスクロース取り込み遺伝子（csc；欧州出願公開149911号パンフレット）、スクロース資化性遺伝子（scrABオペロン；国際公開第90/04636号パンフレット）が挙げられる。
　エネルギー代謝に関与するタンパク質をコードする遺伝子としては、トランスヒドロゲナーゼ遺伝子（pntAB；米国特許 5,830,716号明細書）、チトクロムbo型オキシダーゼ（cytochromoe bo type oxidase）遺伝子(cyoB；欧州特許出願公開1070376号明細書)が挙げられる。
＜１－１－２＞核酸生産菌
　プリン系物質生産能の付与または増強は、従来、バチルス属細菌やエシェリヒア属細菌等のプリン系物質生産菌の育種に採用されてきた方法により行うことができる。
　例えば、プリン系物質生産能は、アデニン要求性等の栄養要求性を付与することにより、またはさらにプリンアナログやスルファグアニジン等の薬剤に対する耐性を付与することにより、付与または増強することができる（特公昭38-23099、特公昭54-17033、特公昭55-45199、特公昭57-14160、特公昭57-41915、特公昭59-42895、US2004-0166575A参照）。プリン系物質生産能を有する栄養要求性株や薬剤耐性株等の変異株は、親株または野生株を突然変異処理に供し、適当な選択培地を用いて所望の表現型を有する変異株を選択することにより取得できる。突然変異処理としては、例えば、Ｘ線の照射、紫外線の照射、Ｎ－メチル－Ｎ’－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）、メチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。
　また、プリン系物質生産能は、プリン系物質の生合成に関与する酵素の細胞内の活性を増強することにより、付与または増強することができる。１種の酵素の活性を増強してもよく、２種またはそれ以上の酵素の活性を増強してもよい。酵素活性を増強する手法については後述する。酵素活性の増強は、例えば、同酵素をコードする遺伝子の発現が増強されるように細菌を改変することにより行うことができる。遺伝子の発現を増強する手法は、WO00/18935号パンフレットや欧州特許出願公開1010755号明細書等に記載されている。
　プリンヌクレオチドは、ホスホリボシルピロリン酸（phosphoribosylpyrophosphate；ＰＲＰＰ）を中間体として生合成される。プリンヌクレオシドは、プリンヌクレオチドが脱リン酸化されることにより生合成される。これらプリン系物質の生合成に関与する酵素としては、例えば、ＰＲＰＰシンセターゼ（PRPP synthetase）（prs）やプリンオペロンにコードされるタンパク質が挙げられる。
　プリンオペロンとしては、例えば、バチルス・サブチリスのpurEKBCSQLFMNHDオペロン（Bacillus subtilis and Its Closest Relatives, Editor in Chief: A.L. Sonenshein, ASM Press, Washington D.C., 2002）やエシェリヒア・コリのpurレギュロン（Escherichia and Salmonella, Second Edition, Editor in Chief: F.C. Neidhardt, ASM Press, Washington D.C., 1996）が挙げられる。例えば、プリンオペロンの発現をまとめて増強してもよく、プリンオペロンに含まれる遺伝子から選択される１またはそれ以上の遺伝子の発現を増強してもよい。
　これらの中では、例えば、ＰＲＰＰシンセターゼ（PRPP synthetase）（prs）およびＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼ（PRPP amidotransferase）（purF）から選択される１またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。
　なお、例えば、プリン系物質の生合成に関与する酵素がフィードバック阻害や発現抑制等の負のレギュレーションを受けている場合は、そのレギュレーションを低減又は解除することにより、酵素活性を増強し、プリン系物質生産能を向上させることができる（WO99/003988）。
　プリンオペロンの発現は、purR遺伝子にコードされるプリンリプレッサーにより抑制される。よって、プリンオペロンの発現は、例えば、プリンリプレッサーの活性を低下させることにより、増強することができる（米国特許第6,284,495号）。プリンリプレッサーの活性は、例えば、プリンリプレッサーをコードするpurR遺伝子を破壊することにより、低下させることができる（米国特許第6,284,495号）。また、プリンオペロンの発現は、プロモーター下流に位置するterminator-antiterminator配列（アテニュエーター配列ともいう）に制御されている（Ebbole, D. J. and Zalkin, H., J. Biol. Chem., 1987, 262, 8274－8287、Ebbole, D. J. and Zalkin, H., J. Biol. Chem., 1988, 263, 10894－10902、Ebbole, D. J. and Zalkin, H., J. Bacteriol., 1989, 171, 2136－2141）。よって、プリンオペロンの発現は、例えば、アテニュエーター配列を欠損させることにより、増強することができる。アテニュエーター配列の欠損は、後述する遺伝子の破壊と同様の手法により行うことができる。
　ＰＲＰＰシンセターゼは、ＡＤＰによるフィードバック阻害を受ける。よって、例えば、ＡＤＰによるフィードバック阻害が低減又は解除された脱感作型ＰＲＰＰシンセターゼをコードする変異型ＰＲＰＰシンセターゼ遺伝子を細菌に保持させることにより、ＰＲＰＰシンセターゼ活性を増強し、プリン系物質生産能を向上させることができる（WO99/003988）。脱感作型ＰＲＰＰシンセターゼとしては、野生型ＰＲＰＰシンセターゼの128位のAsp(D)がAla(A)に置換される変異を有するものが挙げられる（S. G. Bower et al., J. Biol. Chem., 264, 10287 (1989)）。
　ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼは、ＡＭＰおよびＧＭＰによるフィードバック阻害を受ける。よって、例えば、ＡＭＰおよび／またはＧＭＰによるフィードバック阻害が低減又は解除された脱感作型ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼをコードする変異型ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼ遺伝子を細菌に保持させることにより、ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼ活性を増強し、プリン系物質生産能を向上させることができる（WO99/003988）。脱感作型ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼとしては、野生型ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼの326位のLys(K)がGln(Q)に置換される変異を有するものや、野生型ＰＲＰＰアミドトランスフェラーゼの326位のLys(K)がGln(Q)に置換され、且つ410位のPro(P)がTrp(W)に置換される変異を有するものが挙げられる（G. Zhou et al., J. Biol. Chem., 269, 6784 (1994)）。
　また、プリン系物質生産能は、プリン系物質の生合成経路から分岐して他の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性を低下させることにより、付与または増強することができる（WO99/003988）。１種の酵素の活性を低下させてもよく、２種またはそれ以上の酵素の活性を低下させてもよい。なお、ここでいう「プリン系物質の生合成経路から分岐して他の化合物を生成する反応を触媒する酵素」には、プリン系物質の分解に関与する酵素も含まれる。酵素活性を低下させる手法については後述する。
　プリン系物質の生合成経路から分岐して他の化合物を生成する反応を触媒する酵素としては、例えば、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（purine nucleoside phosphorylase）（deoD, pupG）、サクシニル－ＡＭＰシンターゼ（succinyl-AMP synthase）（purA）、アデノシンデアミナーゼ（adenosine deaminase）（add）、イノシン－グアノシンキナーゼ（inosine-guanosine kinase）（gsk）、ＧＭＰレダクターゼ（GMP reductase）（guaC）、６－ホスホグルコン酸デヒドラーゼ（6-phosphogluconate dehydrase）（edd）、ホスホグルコースイソメラーゼ（phophoglucose isomerase）（pgi）、アデニンデアミナーゼ（adenine deaminase）（yicP）、キサントシンホスホリラーゼ（xanthosine phosphorylase）（xapA）、ＩＭＰデヒドロゲナーゼ（guaB）が挙げられる。活性を低下させる酵素は、目的のプリン系物質の種類等に応じて選択してよい。
　また、プリン系物質生産能は、フルクトースビスフォスファターゼ（fructose 1,6-bisphosphatase）（fbp）の活性を低下させることにより、付与または増強することができる（WO2007/125782）。
　また、プリン系物質生産能は、プリン系物質の取り込みに関与するタンパク質の活性を低下させることにより、付与または増強することができる（WO99/003988）。例えば、プリンヌクレオシドの取り込みに関与するタンパク質としては、ヌクレオシドパーミアーゼ（nucleoside permiase）（nupG）が挙げられる（WO99/003988）。
　また、プリン系物質生産能は、プリン系物質の排出に関与するタンパク質の活性を増強することにより、付与または増強することができる。例えば、プリンヌクレオシドの排出に関与するタンパク質としては、rhtA（ybiF）遺伝子（ロシア国特許第2239656号）、yijE遺伝子（ロシア国特許第2244003号）、ydeD遺伝子（ロシア国特許第2244004号）、yicM遺伝子（ロシア国特許第2271391号）、ydhL遺伝子（特表2007-530011）、nepI遺伝子（FEMS Microbiology Letters, Volume 250, Issue 1, pages 39-47, September 2005）にコードされるタンパク質が挙げられる。
　また、イノシン酸生産能は、Ｌ－グルタミンのアナログに対する耐性とプロリンのアナログに対する耐性とを細菌に付与することにより、付与または増強することができる（特開2004-516833）。Ｌ－グルタミンのアナログとしては、アザセリンや６－ジアゾ－５－オキソ－Ｌ－ノルロイシン（ＤＯＮ）が挙げられる。プロリンのアナログとしては、３，４－デヒドロプロリン、Ｌ－アゼチジン－２－カルボン酸、Ｌ－チアゾリジン－４－カルボン酸、（Ｓ）－２，２－ジメチル－４－オキサゾリドカルボン酸、（Ｓ）－５，５－ジメチル－４－チアゾリドカルボン酸、（４Ｓ，２ＲＳ）－２－エチル－４－チアゾリジン－カルボン酸、（２Ｓ，４Ｓ）－４－ヒドロキシ－２－ピロリン－カルボン酸、２－ピペリジンカルボン酸、及び２，５－ピロリジンジオンが挙げられる。イノシン酸生産菌としては、例えば、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス CJIP009（KCCM-10226）（特開2004-516833）が挙げられる。
　また、キサンチル酸生産能は、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Corynebacterium ammmoniagenes）を中心とするコリネ型細菌のキサンチル酸生産菌の育種に用いられる方法により、付与または増強することができる。そのような方法としては、例えば、PRPP amidotransferase活性の増強（特開平8-168383）、脂肪族アミノ酸に対する耐性の付与（特開平4-262790）、デヒドロプロリンに対する耐性の付与（韓国特許公開公報2003-56490）が挙げられる。
　上記のようなプリン系物質生産能を付与または増強する手法は、単独で用いてもよく、任意の組み合わせで用いてもよい。
＜１－１－３＞タンパク質生産菌
　タンパク質は、コリネ型細菌で機能するシグナルペプチドを利用して、コリネ型細菌により分泌生産することができる。具体的には、コリネ型細菌で機能するプロモーター配列、同プロモーター配列の下流に接続されたコリネ型細菌で機能するシグナルペプチドをコードする核酸配列、および同シグナルペプチドをコードする核酸配列の下流に接続された目的のタンパク質をコードする核酸配列を含む遺伝子構築物をコリネ型細菌に保持させ、目的のタンパク質を発現することにより、目的のタンパク質を分泌生産することができる。目的のタンパク質をコードする核酸配列は、シグナルペプチドをコードする核酸配列の下流に、同シグナルペプチドとの融合タンパク質として異種タンパク質が発現するよう連結されていればよい。タンパク質の分泌生産に用いるコリネ型細菌としては、例えば、細胞表層タンパク質の活性が低下した株が挙げられる。そのような株としては、C. glutamicum AJ12036 (FERM BP-734) の細胞表層タンパク質PS2の欠損株であるC. glutamicum YDK010株（WO2004/029254）が挙げられる。また、タンパク質の分泌生産能を付与または増強する方法としては、例えば、ペニシリン結合タンパク質の活性が低下するようにコリネ型細菌を改変すること（WO2013/065869）、メタロペプチダーゼをコードする遺伝子の発現が上昇するようにコリネ型細菌を改変すること（WO2013/065772）、変異型リボソームタンパク質Ｓ１遺伝子を保持するようにコリネ型細菌を改変すること（WO2013/118544）、Gln-Glu-Thrを含むアミノ酸配列をシグナルペプチドと目的のタンパク質の間に挿入して目的のタンパク質を発現すること（WO2013/062029）が挙げられる。上記のようなタンパク質生産能を付与または増強する手法は、単独で用いてもよく、任意の組み合わせで用いてもよい。
＜１－２＞キシロース資化性
　本発明の細菌は、キシロース資化性を有する。本発明の細菌は、本来的にキシロース資化性を有するものであってもよく、キシロース資化性を有するように改変されたものであってもよい。キシロース資化性を有する細菌は、例えば、上記のような細菌キシロース資化性を付与することにより、または、上記のような細菌のキシロース資化性を増強することにより、取得できる。
　キシロース資化性は、キシロース資化経路を構成するタンパク質から選択される１またはそれ以上のタンパク質の活性が増大するように細菌を改変することにより、付与または増強できる。活性を増大させるタンパク質は、用いるコリネ型細菌の種類等に応じて適宜選択できる。
　キシロースの資化経路としては、下記の２種の経路が挙げられる。本発明の細菌は、両方の経路を有していてもよく、片方の経路のみを有していてもよい。
　経路１：キシロース　→　キシルロース　→　キシルロース－５リン酸
　経路２：キシロース　→　キシロノラクトン　→　キシロン酸　→　２－ケト－３－デオキシキシロン酸　→　α－ケトグルタル酸セミアルデヒド　→　α－ケトグルタル酸
　経路１は、キシロースイソメラーゼ（xylose isomerase）およびキシルロキナーゼ（xylulokinase）により構成される。
　「キシロースイソメラーゼ」とは、Ｄ－キシロースをＤ－キシルロースに異性化する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 5.3.1.5）。また、同活性を「キシロースイソメラーゼ活性」ともいう。
　D-Xylose → D-xylulose
　「キシルロキナーゼ」とは、Ｄ－キシルロースをリン酸化する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 2.7.1.17）。また、同活性を「キシルロキナーゼ活性」ともいう。
　ATP + D-xylulose → ADP + D-xylulose 5-phosphate
　キシロースイソメラーゼをコードする遺伝子としては、xylA遺伝子が挙げられる。キシルロキナーゼをコードする遺伝子としては、xylB遺伝子が挙げられる。xylA遺伝子およびxylB遺伝子としては、Escherichia coliのxylA遺伝子およびxylB遺伝子が挙げられる。Escherichia coli K-12 MG1655株のxylABオペロンの塩基配列を配列番号１０に示す。配列番号１０に示す塩基配列中、xylA遺伝子およびxylB遺伝子は、それぞれ、1～1323位の配列および1395～2849位の配列に相当する。Escherichia coli K-12 MG1655株のXylAタンパク質およびXylBタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号１１および１２に示す。また、xylB遺伝子としては、Corynebacterium glutamicumのxylB遺伝子が挙げられる。C. glutamicum ATCC13869のxylB遺伝子の塩基配列およびXylBタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号３５および３６に示す。
　経路２は、キシロースデヒドロゲナーゼ（xylose dehydrogenase）、キシロノラクトナーゼ（xylonolactonase）、キシロン酸デヒドラターゼ（xylonate dehydratase）、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ（2-keto-3-deoxy-xylonate dehydratase）、およびα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（alpha-ketoglutaric semialdehyde dehydrogenase）により構成される。なお、経路２の後半、すなわちキシロン酸デヒドラターゼ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ、およびα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼにより構成されるキシロン酸からα－ケトグルタル酸までの経路を、「Weimberg pathway」ともいう（J. Biol. Chem., 236: 629-636）。また、経路２全体、またはWeimberg pathwayを、「NXA（Novel Xylose Assimilation）経路」ともいう。
　「キシロースデヒドロゲナーゼ」とは、Ｄ－キシロースをＤ－キシロノラクトンに酸化する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 1.1.1.175または1.1.1.179）。また、同活性を「キシロースデヒドロゲナーゼ活性」ともいう。
　D-xylose + NAD(P)+ → D-xylonolactone + NAD(P)H + H+
　「キシロノラクトナーゼ」とは、Ｄ－キシロノラクトンを開環する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 3.1.1.68）。また、同活性を「キシロノラクトナーゼ活性」ともいう。
　D-xylono-1,4-lactone + H2O → D-xylonate
　「キシロン酸デヒドラターゼ」とは、Ｄ－キシロン酸を脱水する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 4.2.1.82）。また、同活性を「キシロン酸デヒドラターゼ活性」ともいう。
　D-xylonate → 2-dehydro-3-deoxy-D-xylonate + H2O
　「２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ」とは、２－ケト－３－デオキシキシロン酸を脱水する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 4.2.1.-）。また、同活性を「２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ活性」ともいう。
　2-dehydro-3-deoxy-D-xylonate → alpha-ketoglutaric semialdehyde + H2O
　「α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ」とは、α－ケトグルタル酸セミアルデヒドを酸化する下記反応を触媒する活性を有するタンパク質をいう（EC 1.2.1.26）。また、同活性を「α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ活性」ともいう。
　alpha-ketoglutaric semialdehyde + NADP+ + H2O → 2-ketoglutarate + NADPH + 2H+
　経路２を構成する酵素をコードする遺伝子としては、xylXABCDオペロンの遺伝子が挙げられる。xylB遺伝子が、キシロースデヒドロゲナーゼをコードする。xylC遺伝子が、キシロノラクトナーゼをコードする。xylD遺伝子が、キシロン酸デヒドラターゼをコードする。xylX遺伝子が、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼをコードする。xylA遺伝子が、α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼをコードする。
　なお、遺伝子名が重複しているが、経路１のキシロースイソメラーゼおよびキシルロキナーゼをコードするxylA遺伝子およびxylB遺伝子と、経路２のα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼおよびキシロースデヒドロゲナーゼをコードするxylA遺伝子およびxylB遺伝子とは、それぞれ別の遺伝子である。
　xylXABCDオペロンとしては、カウロバクター・クレセンタス（Caulobacter crescentus）のxylXABCDオペロンが挙げられる。Caulobacter crescentusとしては、CB15株、NA1000株、K31株が挙げられる。Caulobacter crescentus CB15株、NA1000株、K31株のゲノム配列は、それぞれ、ＮＣＢＩデータベースにGenBank Accession Nos. AE005673、CP001340、CP000927として登録されている。また、Caulobacter crescentus CB15株のxylXABCD遺伝子は、それぞれ、CC_0822、CC_0821、CC_0820、CC_0819、CC_0823のGene symbolで登録されている。また、Caulobacter crescentus NA1000株のxylXABCD遺伝子は、それぞれ、CCNA_00865、CCNA_00864、CCNA_00863、CCNA_00862、CCNA_00866のGene symbolで登録されている。また、Caulobacter crescentus CB15株のxylABCD遺伝子（xylXは未同定）は、それぞれ、Caul_4001、Caul_4002、Caul_4003、Caul_4000のGene symbolで登録されている。Caulobacter crescentus CB15株のxylXABCD遺伝子の塩基配列を、それぞれ、配列番号３７、３９、４１、４３、および４５に示す。Caulobacter crescentus CB15株のXylXABCDタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号３８、４０、４２、４４、および４６に示す。
　また、キシロースデヒドロゲナーゼ遺伝子としては、スフィンゴモナス・エロデア（Sphingomonas elodea）（旧名称Pseudomonas elodea）等のスフィンゴモナス属またはシュードモナス属細菌のxylB遺伝子が挙げられる。Sphingomonas elodeaのxylB遺伝子の塩基配列およびXylBタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号１５および１６に示す。
　また、キシロノラクトナーゼ遺伝子としては、Sphingomonas elodea（Pseudomonas elodea）等のスフィンゴモナス属またはシュードモナス属細菌のxylC遺伝子が挙げられる。Sphingomonas elodeaのxylC遺伝子の塩基配列およびXylCタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号１７および１８に示す。
　また、キシロン酸デヒドラターゼ遺伝子としては、Escherichia coli等のエシェリヒア属細菌のyjhG遺伝子やyagF遺伝子、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）等のアグロバクテリウム属細菌、ヘルバスピリラム・セロペディカ（Herbaspirillum seropedicae）等のヘルバスピリラム属細菌、アクチノプラネス・ミズーリエンシス（Actinoplanes missouriensis）等のアクチノプラネス属細菌、アスペルギルス・オリゼー（Aspergillus oryzae）等のアスペルギルス属微生物のxylD遺伝子ホモログが挙げられる。Escherichia coli K-12 MG1655株のyagF遺伝子の塩基配列およびYagFタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号１９および２０に示す。
　また、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ遺伝子としては、Agrobacterium tumefaciens等のアグロバクテリウム属細菌、Sphingomonas elodea（Pseudomonas elodea）等のスフィンゴモナス属またはシュードモナス属細菌、ゾベリア・ガラクタニボランス（Zobellia galactanivorans）等のゾベリア属細菌、サーモバチルス・コンポスティ（Thermobacillus composti）等のサーモバチルス属細菌、アルスロバクター・グロビフォルミス（Arthrobacter globiformis）等のアルスロバクター属細菌のxylX遺伝子ホモログが挙げられる。Sphingomonas elodeaのxylX遺伝子の塩基配列およびXylXタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号２１および２２に示す。
　また、α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ遺伝子としては、アゾスピリラム・ブラシレンセ（Azospirillum brasilense）等のアゾスピリラム属細菌やハロモナス・ボリビエンシス（Halomonas boliviensis）等のハロモナス属細菌のxylA遺伝子ホモログ、およびバチルス・サブチリス（Bacillus subtilis）等のバチルス属細菌のycbD遺伝子が挙げられる。Bacillus subtilisのycbD遺伝子の塩基配列およびYcbDタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号２３および２４に示す。
　キシロース資化経路を構成する各タンパク質の活性は、既報（非特許文献３、特許文献８）に従い測定することができる。
　なお、グルコースデヒドロゲナーゼ（EC 1.1.1.47、EC 1.1.1.118、EC 1.1.1.119、またはEC 1.1.5.2等）には、Ｄ－キシロースをＤ－キシロノラクトンに酸化する反応を触媒するものがある。よって、キシロース資化性を付与又は増強するためには、上記のようなキシロースデヒドロゲナーゼに代えて、あるいは加えて、そのようなグルコースデヒドロゲナーゼの活性を増強してもよい。そのようなグルコースデヒドロゲナーゼとしては、Pseudomonas putida S12のグルコースデヒドロゲナーゼが挙げられる（Jean-Paul Meijnen et al., Appl Environ Microbiol. 2009 May;75(9) 2784-2791）。Pseudomonas putida S12のグルコースデヒドロゲナーゼは、ピロロキノリンキノンを電子受容体として、Ｄ－キシロースをＤ－キシロノラクトンに酸化する反応を触媒する。
　なお、上記の目的物質の生産能の付与または増強やキシロース資化性の付与または増強等の細菌の改変に使用される遺伝子は、元の機能が維持されたタンパク質をコードする限り、上記例示した遺伝子や公知の塩基配列を有する遺伝子に限られず、そのバリアントであってもよい。例えば、細菌の改変に使用される遺伝子は、公知のタンパク質のアミノ酸配列において、１若しくは数個の位置での１又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入又は付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする遺伝子であってもよい。遺伝子やタンパク質のバリアントについては、後述するNCgl2954遺伝子およびそれがコードするタンパク質のバリアントに関する記載を準用できる。
＜１－３＞NCgl2954遺伝子への変異導入によるキシロース資化性の向上
　本発明の細菌は、NCgl2954遺伝子に変異が導入されたことにより、キシロース資化性が向上している。本発明の細菌は、目的物質の生産能を有するコリネ型細菌のNCgl2954遺伝子に変異を導入することにより、キシロース資化性を向上させることによって得ることができる。また、本発明の細菌は、コリネ型細菌のNCgl2954遺伝子に変異を導入することによりキシロース資化性を向上させた後に、目的物質の生産能を付与することによっても得ることができる。なお、本発明の細菌は、NCgl2954遺伝子への変異導入によるキシロース資化性の向上により、目的物質の生産能を獲得したものであってもよい。本発明において、本発明の細菌を構築するための改変は、任意の順番で行うことができる。
　キシロース資化性の向上は、具体的には、キシロース取り込み能の向上によるものであってよい。すなわち、本発明の細菌は、NCgl2954遺伝子に変異が導入されたことにより、キシロース取り込み能が向上したものであってよい。
　キシロース資化性の向上（例えばキシロース取り込み能の向上）は、例えば、キシロースを唯一炭素源とする培地でコリネ型細菌を培養した際の生育の向上やキシロース消費の向上を確認することにより、確認できる。
＜１－３－１＞NCgl2954遺伝子およびNCgl2954タンパク質
　NCgl2954遺伝子は、転写因子をコードする遺伝子である。NCgl2954遺伝子がコードするタンパク質をNCgl2954タンパク質ともいう。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のNCgl2954遺伝子は、NCBIデータベースにGenBank accession NC_003450 (VERSION NC_003450.3 GI:58036263)として登録されているゲノム配列中、3261130～3261993位の配列に相当する。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のNCgl2954遺伝子は、Cgl3059と同義である。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のNCgl2954タンパク質は、GenBank accession NP_602251 (version NP_602251.2  GI:23309012)として登録されている。また、Corynebacterium glutamicum ATCC13869のNCgl2954遺伝子の塩基配列、及びNCgl2954タンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号１３および１４に示す。
　NCgl2954遺伝子は、元の機能が維持されている限り、上記例示したNCgl2954遺伝子のバリアントであってもよい。同様に、NCgl2954タンパク質は、元の機能が維持されている限り、上記例示したNCgl2954タンパク質のバリアントであってもよい。そのような元の機能が維持されたバリアントを「保存的バリアント」という場合がある。本発明において、「NCgl2954遺伝子」という用語は、上記例示したNCgl2954遺伝子に限られず、その保存的バリアントを包含するものとする。同様に、「NCgl2954タンパク質」という用語は、上記例示したNCgl2954タンパク質に限られず、その保存的バリアントを包含するものとする。保存的バリアントとしては、例えば、上記例示したNCgl2954遺伝子およびNCgl2954タンパク質のホモログや人為的な改変体が挙げられる。
　「元の機能が維持されている」とは、遺伝子またはタンパク質のバリアントが、元の遺伝子またはタンパク質の機能（活性や性質）に対応する機能（活性や性質）を有することをいう。すなわち、「元の機能が維持されている」とは、NCgl2954遺伝子にあっては、遺伝子のバリアントが、例えば、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有することをいう。また、「元の機能が維持されている」とは、NCgl2954遺伝子にあっては、遺伝子のバリアントが、元の機能が維持されたタンパク質をコードすることであってもよい。同様に、「元の機能が維持されている」とは、NCgl2954タンパク質にあっては、タンパク質のバリアントが、例えば、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有することをいう。キシロース資化性の向上は、具体的には、キシロース取り込み能の向上によるものであってよい。すなわち、「キシロース資化性を向上させる」とは、キシロース取り込み能を向上させることであってよい。
　遺伝子またはタンパク質のバリアントが、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有するか否かは、例えば、キシロース資化性を有するコリネ型細菌において同遺伝子または同タンパク質をコードする遺伝子を欠損させ、キシロース資化性が向上するか否かを確認することにより、確認できる。
　上記NCgl2954遺伝子のホモログは、例えば、上記NCgl2954遺伝子の塩基配列を問い合わせ配列として用いたBLAST検索やFASTA検索によって公開データベースから容易に取得することができる。また、上記NCgl2954遺伝子のホモログは、例えば、コリネ型細菌の染色体を鋳型にして、これら公知の遺伝子配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いたＰＣＲにより取得することができる。
　NCgl2954遺伝子は、元の機能が維持されている限り、上記アミノ酸配列において、１若しくは数個の位置での１又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入または付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質をコードするものであってもよい。なお上記「１又は数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には、例えば、１～５０個、１～４０個、１～３０個、好ましくは１～２０個、より好ましくは１～１０個、さらに好ましくは１～５個、特に好ましくは１～３個を意味する。
　上記の１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、または付加は、タンパク質の機能が正常に維持される保存的変異である。保存的変異の代表的なものは、保存的置換である。保存的置換とは、置換部位が芳香族アミノ酸である場合には、Phe、Trp、Tyr間で、置換部位が疎水性アミノ酸である場合には、Leu、Ile、Val間で、極性アミノ酸である場合には、Gln、Asn間で、塩基性アミノ酸である場合には、Lys、Arg、His間で、酸性アミノ酸である場合には、Asp、Glu間で、ヒドロキシル基を持つアミノ酸である場合には、Ser、Thr間でお互いに置換する変異である。保存的置換とみなされる置換としては、具体的には、AlaからSer又はThrへの置換、ArgからGln、His又はLysへの置換、AsnからGlu、Gln、Lys、His又はAspへの置換、AspからAsn、Glu又はGlnへの置換、CysからSer又はAlaへの置換、GlnからAsn、Glu、Lys、His、Asp又はArgへの置換、GluからGly、Asn、Gln、Lys又はAspへの置換、GlyからProへの置換、HisからAsn、Lys、Gln、Arg又はTyrへの置換、IleからLeu、Met、Val又はPheへの置換、LeuからIle、Met、Val又はPheへの置換、LysからAsn、Glu、Gln、His又はArgへの置換、MetからIle、Leu、Val又はPheへの置換、PheからTrp、Tyr、Met、Ile又はLeuへの置換、SerからThr又はAlaへの置換、ThrからSer又はAlaへの置換、TrpからPhe又はTyrへの置換、TyrからHis、Phe又はTrpへの置換、及び、ValからMet、Ile又はLeuへの置換が挙げられる。また、上記のようなアミノ酸の置換、欠失、挿入、付加、または逆位等には、遺伝子が由来する生物の個体差、種の違いに基づく場合などの天然に生じる変異（mutant又はvariant）によって生じるものも含まれる。
　また、NCgl2954遺伝子は、元の機能が維持されている限り、上記アミノ酸配列全体に対して、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、さらに好ましくは97%以上、特に好ましくは99%以上の相同性を有するタンパク質をコードする遺伝子であってもよい。尚、本明細書において、「相同性」（homology）は、「同一性」（identity）を意味する。
　また、NCgl2954遺伝子は、元の機能が維持されている限り、公知の遺伝子配列から調製され得るプローブ、例えば上記塩基配列の全体または一部に対する相補配列、とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAであってもよい。「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。一例を示せば、相同性が高いDNA同士、例えば80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、さらに好ましくは97%以上、特に好ましくは99%以上の相同性を有するDNA同士がハイブリダイズし、それより相同性が低いDNA同士がハイブリダイズしない条件、あるいは通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である60℃、1×SSC、0.1% SDS、好ましくは60℃、0.1×SSC、0.1% SDS、より好ましくは68℃、0.1×SSC、0.1% SDSに相当する塩濃度および温度で、１回、好ましくは２～３回洗浄する条件を挙げることができる。
　上述の通り、上記ハイブリダイゼーションに用いるプローブは、遺伝子の相補配列の一部であってもよい。そのようなプローブは、公知の遺伝子配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、上記塩基配列を含むDNA断片を鋳型とするPCRによって作製することができる。例えば、プローブとしては、300 bp程度の長さのDNA断片を用いることができる。プローブとして300 bp程度の長さのDNA断片を用いる場合には、ハイブリダイゼーションの洗いの条件としては、50℃、2×SSC、0.1% SDSが挙げられる。
　また、宿主によってコドンの縮重性が異なるので、NCgl2954遺伝子は、元の機能が維持されている限り、任意のコドンをそれと等価のコドンに置換したものであってもよい。
　なお、上記の遺伝子やタンパク質の保存的バリアントに関する記載は、Ｌ－アミノ酸生合成系酵素等の任意のタンパク質、およびそれらをコードする遺伝子にも準用できる。
＜１－３－２＞NCgl2954遺伝子に導入される変異
　「NCgl2954遺伝子に変異が導入される」とは、具体的には、染色体上のNCgl2954遺伝子のコード領域および／または発現制御領域に変異が導入されることをいう。「発現制御領域」とは、遺伝子の発現に影響する部位の総称である。発現制御領域としては、プロモーター、シャインダルガノ（ＳＤ）配列（リボソーム結合部位（ＲＢＳ）ともいう）、ＲＢＳと開始コドンとの間のスペーサー領域が挙げられる。発現制御領域は、例えば、プロモーター検索ベクターやＧＥＮＥＴＹＸ等の遺伝子解析ソフトを用いて決定することができる。
　NCgl2954遺伝子に導入される変異は、コリネ型細菌のキシロース資化性を向上させるものであれば特に制限されない。コリネ型細菌のキシロース資化性を向上させる変異としては、NCgl2954遺伝子の発現が弱化される変異やNCgl2954遺伝子が破壊される変異が挙げられる。すなわち、本発明の細菌は、例えば、NCgl2954遺伝子の発現が弱化されることにより、または該遺伝子が破壊されることにより、キシロース資化性が向上したものであってもよい。
　「遺伝子の発現が弱化される」ことを、「遺伝子の発現が低下する」ともいう。「遺伝子の発現が低下する」とは、同遺伝子の細胞当たりの発現量が野生株や親株等の非改変株と比較して減少することを意味する。「遺伝子の発現が低下する」ことには、同遺伝子が全く発現していない場合が含まれる。遺伝子の発現は、例えば、非改変株と比較して、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
　遺伝子の発現の低下は、例えば、転写効率の低下によるものであってもよく、翻訳効率の低下によるものであってもよく、それらの組み合わせによるものであってもよい。遺伝子の発現の低下は、例えば、遺伝子のプロモーター、ＳＤ配列（ＲＢＳ）、ＲＢＳと開始コドンとの間のスペーサー領域等の発現制御領域を改変することにより達成できる。発現制御領域を改変する場合には、発現制御領域は、好ましくは１塩基以上、より好ましくは２塩基以上、特に好ましくは３塩基以上が改変される。また、発現制御領域の一部または全部を欠失させてもよい。また、遺伝子の発現の低下は、例えば、遺伝子のコード領域に遺伝子の発現が低下するような変異を導入することによっても達成できる。例えば、遺伝子のコード領域のコドンを、宿主においてより低頻度で利用される同義コドンに置き換えることによって、遺伝子の発現を低下させることができる。また、例えば、後述するような遺伝子の破壊により、遺伝子の発現自体が低下し得る。
　「遺伝子が破壊される」とは、正常に機能するタンパク質を産生しないように同遺伝子が改変されることを意味する。「正常に機能するタンパク質を産生しない」ことには、同遺伝子からタンパク質が全く産生されない場合や、同遺伝子から分子当たりの機能（活性や性質）が低下又は消失したタンパク質が産生される場合が含まれる。
　遺伝子の破壊は、例えば、染色体上の遺伝子のコード領域の一部又は全部を欠損させることにより達成できる。さらには、染色体上の遺伝子の前後の配列を含めて、遺伝子全体を欠失させてもよい。遺伝子の前後の配列には、例えば、遺伝子の発現制御領域が含まれてよい。欠失させる領域は、Ｎ末端領域、内部領域、Ｃ末端領域等のいずれの領域であってもよい。通常、欠失させる領域は長い方が確実に遺伝子を不活化することができる。また、欠失させる領域の前後の配列は、リーディングフレームが一致しないことが好ましい。
　また、遺伝子の破壊は、例えば、染色体上の遺伝子のコード領域にアミノ酸置換（ミスセンス変異）を導入すること、終止コドンを導入すること（ナンセンス変異）、あるいは１～２塩基を付加または欠失するフレームシフト変異を導入すること等によっても達成できる（Journal of Biological Chemistry 272:8611-8617(1997), Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 95 5511-5515(1998), Journal of Biological Chemistry 26 116, 20833-20839(1991)）。
　また、遺伝子の破壊は、例えば、染色体上の遺伝子のコード領域に他の配列を挿入することによっても達成できる。挿入部位は遺伝子のいずれの領域であってもよい。通常、挿入する配列は長い方が確実に遺伝子を不活化することができる。また、挿入部位の前後の配列は、リーディングフレームが一致しないことが好ましい。他の配列としては、遺伝子の破壊を達成できるものであれば特に制限されないが、例えば、抗生物質耐性遺伝子等のマーカー遺伝子や目的物質の生産に有用な遺伝子が挙げられる。
　染色体上の遺伝子を上記のように改変することは、例えば、遺伝子の部分配列を欠失し、正常に機能するタンパク質を産生しないように改変した欠失型遺伝子を作製し、該欠失型遺伝子を含む組換えＤＮＡで宿主を形質転換して、欠失型遺伝子と染色体上の野生型遺伝子とで相同組換えを起こさせることにより、染色体上の野生型遺伝子を欠失型遺伝子に置換することによって達成できる。その際、組換えＤＮＡには、宿主の栄養要求性等の形質にしたがって、マーカー遺伝子を含ませておくと操作がしやすい。欠失型遺伝子によってコードされるタンパク質は、生成したとしても、野生型タンパク質とは異なる立体構造を有し、機能が低下又は消失する。このような相同組換えを利用した遺伝子置換による遺伝子破壊は既に確立しており、「Redドリブンインテグレーション(Red-driven integration)」と呼ばれる方法（Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97:6640-6645 (2000)）、Redドリブンインテグレーション法とλファージ由来の切り出しシステム（Cho, E. H., Gumport, R. I., Gardner, J. F. J. Bacteriol. 184: 5200-5203 (2002)）とを組み合わせた方法（WO2005/010175号参照）等の直鎖状ＤＮＡを用いる方法や、温度感受性複製起点を含むプラスミドを用いる方法、接合伝達可能なプラスミドを用いる方法、宿主内で機能する複製起点を持たないスイサイドベクターを用いる方法などがある（米国特許第6303383号、特開平05-007491号）。
　また、変異の導入は、例えば、突然変異処理により行ってもよい。突然変異処理としては、Ｘ線の照射、紫外線の照射、ならびにＮ－メチル－Ｎ'－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）、およびメチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。
　遺伝子の発現が低下したことは、同遺伝子の転写量が低下したことを確認することや、同遺伝子から発現するタンパク質の量が低下したことを確認することにより確認できる。
　遺伝子の転写量が低下したことの確認は、同遺伝子から転写されるmRNAの量を非改変株と比較することによって行うことが出来る。mRNAの量を評価する方法としては、ノーザンハイブリダイゼーション、RT－PCR等が挙げられる（Molecular cloning（Cold spring Harbor Laboratory Press, Cold spring Harbor (USA), 2001））。mRNAの量は、非改変株と比較して、例えば、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
　タンパク質の量が低下したことの確認は、抗体を用いてウェスタンブロットによって行うことが出来る（Molecular cloning（Cold spring Harbor Laboratory Press, Cold spring Harbor (USA), 2001））。タンパク質の量は、非改変株と比較して、例えば、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
　遺伝子が破壊されたことは、破壊に用いた手段に応じて、同遺伝子の一部または全部の塩基配列、制限酵素地図、または全長等を決定することで確認できる。
　また、NCgl2954遺伝子に導入される変異として、具体的には、例えば、下記（１）～（７）に示す変異が挙げられる。下記（１）～（７）に示す変異が導入されることにより、例えば、NCgl2954遺伝子の発現が弱化されてもよく、NCgl2954遺伝子が破壊されてもよい。なお、下記（１）～（７）に示す変異を有さないNCgl2954遺伝子を「野生型NCgl2954遺伝子」、下記（１）～（７）に示す変異を有するNCgl2954遺伝子を「変異型NCgl2954遺伝子」ともいう。また、野生型NCgl2954遺伝子にコードされるタンパク質を「野生型NCgl2954タンパク質」、変異型NCgl2954遺伝子にコードされるタンパク質を「変異型NCgl2954タンパク質」ともいう。野生型NCgl2954遺伝子としては、上記例示したNCgl2954遺伝子およびその保存的バリアントが挙げられる。
（１）野生型NCgl2954タンパク質の４８３位のプロリン残基が他のアミノ酸残基に置換される変異；
（２）野生型NCgl2954タンパク質の３３４位のシステイン残基が他のアミノ酸残基に置換される変異；
（３）野生型NCgl2954タンパク質の３７７位のチロシン残基が他のアミノ酸残基に置換される変異；
（４）野生型NCgl2954タンパク質の３６５位のロイシン残基が他のアミノ酸残基に置換される変異；
（５）野生型NCgl2954タンパク質の３６６位のロイシン残基が他のアミノ酸残基に置換される変異；
（６）野生型NCgl2954タンパク質の３６７位のアラニン残基が他のアミノ酸残基に置換される変異；
（７）野生型NCgl2954タンパク質の３６８位以降のアミノ酸残基が欠失する変異。
　「他のアミノ酸残基」（置換後のアミノ酸残基）は、置換前のアミノ酸残基以外であれば特に制限されない。「他のアミノ酸残基」として、具体的には、リジン、オルニチン、アルギニン、ヒスチジン、イソロイシン、アラニン、バリン、ロイシン、グリシン、スレオニン、セリン、プロリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、システイン、メチオニン、グルタミン酸、アスパラギン酸、グルタミン、アスパラギンの内、置換前のアミノ酸残基以外のものが挙げられる。４８３位のプロリン残基は、例えば、ロイシン残基に置換されてよい。３３４位のシステイン残基は、例えば、アルギニン残基に置換されてよい。３６５位のロイシン残基は、例えば、セリン残基に置換されてよい。３６６位のロイシン残基は、例えば、アルギニン残基に置換されてよい。３６７位のアラニン残基は、例えば、フェニルアラニン残基に置換されてよい。３７７位のチロシン残基は、例えば、アスパラギン残基に置換されてよい。
　変異型NCgl2954遺伝子は、これらの変異から選択される１またはそれ以上の変異を有していてよい。例えば、変異型NCgl2954遺伝子は、上記（４）～（７）の変異をセットで有していてよい。具体的には、例えば、配列番号１３に示す野生型NCgl2954遺伝子の１０９２位および１０９３位のＧＣが欠損して生じる変異型NCgl2954遺伝子は、配列番号１４に示す野生型NCgl2954タンパク質の３６５～３６７位のロイシン－ロイシン－アラニン残基がセリン－アルギニン－フェニルアラニン残基に置換され、且つ、３６８位以降のアミノ酸残基が欠失した変異型NCgl2954タンパク質をコードする。
　本発明において、「野生型NCgl2954タンパク質のＸ位のアミノ酸残基」とは、特記しない限り、配列番号１４におけるＸ位のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基を意味する。すなわち、上記（１）～（７）に示す変異は、言い換えると、それぞれ、以下の通りであってよい。
（１）配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基がプロリン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（２）配列番号１４の３３４位のシステイン残基に相当するアミノ酸残基がシステイン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（３）配列番号１４の３７７位のチロシン残基に相当するアミノ酸残基がチロシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（４）配列番号１４の３６５位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（５）配列番号１４の３６６位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（６）配列番号１４の３６７位のアラニン残基に相当するアミノ酸残基がアラニン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
（７）配列番号１４の３６８位以降のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基が欠失する変異。
　なお、アミノ酸配列における「Ｘ位」とは、同アミノ酸配列のN末端からＸ番目を意味し、N末端のアミノ酸残基が１位のアミノ酸残基である。すなわち、上記アミノ酸残基の位置は相対的な位置を示すものであって、アミノ酸の欠失、挿入、または付加などによってその位置は前後することがある。例えば、「野生型NCgl2954タンパク質の４８３位のプロリン残基」とは、配列番号１４における４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基を意味し、４８３位よりもN末端側の１アミノ酸残基が欠失している場合は、N末端から４８２番目のアミノ酸残基が「野生型NCgl2954タンパク質の４８３位のプロリン残基」であるものとする。また、４８３位よりもN末端側に１アミノ酸残基挿入されている場合は、N末端から４８４番目のアミノ酸残基が「野生型NCgl2954タンパク質の４８３位のプロリン残基」であるものとする。
　任意のアミノ酸配列において、どのアミノ酸残基が「配列番号１４におけるＸ位のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基」であるかは、当該任意のアミノ酸配列と配列番号１４のアミノ酸配列とアライメントを行うことにより決定できる。アライメントは、例えば、公知の遺伝子解析ソフトウェアを利用して行うことができる。具体的なソフトウェアとしては、日立ソリューションズ製のDNASISや、ゼネティックス製のGENETYXなどが挙げられる（Elizabeth C. Tyler et al., Computers and Biomedical Research, 24(1), 72-96, 1991；Barton GJ et al., Journal of molecular biology, 198(2), 327-37. 1987）。
　なお、野生型NCgl2954タンパク質が配列番号１４に示すアミノ酸配列以外のアミノ酸配列を有する場合には、上記（１）～（７）に示す変異が導入されるアミノ酸残基は、保存されていてもよく、保存されていなくてもよい。すなわち、例えば、野生型NCgl2954タンパク質において、「配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基」はプロリン残基でないことがあり得る。よって、例えば、「配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン残基に置換される変異」には、野生型NCgl2954タンパク質における当該箇所のアミノ酸残基がプロリン残基である場合に当該プロリン残基がロイシン残基に置換される変異に限られず、当該箇所のアミノ酸残基がプロリン残基でない場合に当該アミノ酸残基がロイシン残基に置換される変異も含まれてよい。
　変異型NCgl2954遺伝子は、野生型NCgl2954遺伝子を上述したような変異を有するよう改変することにより取得できる。ＤＮＡの改変は公知の手法により行うことができる。ＤＮＡの改変は、具体的には、例えば、ＤＮＡの目的部位に目的の変異を導入する部位特異的変異法により行うことができる。部位特異的変異法としては、PCRを用いる方法（Higuchi, R., 61, in PCR technology, Erlich, H. A. Eds., Stockton press (1989)；Carter, P., Meth. in Enzymol., 154, 382 (1987)）や、ファージを用いる方法（Kramer,W. and Frits, H. J., Meth. in Enzymol., 154, 350 (1987)；Kunkel, T. A. et al., Meth. in Enzymol., 154, 367 (1987)）が挙げられる。また、変異型NCgl2954遺伝子は、化学合成によっても取得できる。
＜１－４＞タンパク質の活性を低下させる手法
　以下に、タンパク質の活性を低下させる手法について説明する。
　「タンパク質の活性が低下する」とは、同タンパク質の細胞当たりの活性が野性株や親株等の非改変株と比較して減少していることを意味し、活性が完全に消失している場合を含む。「タンパク質の活性が低下する」とは、具体的には、非改変株と比較して、同タンパク質の細胞当たりの分子数が低下していること、および／または、同タンパク質の分子当たりの機能が低下していることをいう。すなわち、「タンパク質の活性が低下する」という場合の「活性」とは、タンパク質の触媒活性に限られず、タンパク質をコードする遺伝子の転写量（ｍＲＮＡ量）または翻訳量（タンパク質の量）を意味してもよい。なお、「タンパク質の細胞当たりの分子数が低下している」ことには、同タンパク質が全く存在していない場合が含まれる。また、「タンパク質の分子当たりの機能が低下している」ことには、同タンパク質の分子当たりの機能が完全に消失している場合が含まれる。タンパク質の活性は、非改変株と比較して低下していれば特に制限されないが、例えば、非改変株と比較して、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
　タンパク質の活性が低下するような改変は、例えば、同タンパク質をコードする遺伝子の発現を低下させることにより達成できる。また、タンパク質の活性が低下するような改変は、例えば、同タンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより達成できる。また、タンパク質の活性が低下するような改変は、例えば、突然変異処理により行ってもよい。遺伝子の発現を低下させる手法、遺伝子を破壊する手法、および突然変異処理については、いずれも上述した通りである。
　なお、タンパク質が複数のサブユニットからなる複合体として機能する場合、結果としてタンパク質の活性が低下する限り、それら複数のサブユニットの全てを改変してもよく、一部のみを改変してもよい。すなわち、例えば、それらのサブユニットをコードする複数の遺伝子の全てを破壊等してもよく、一部のみを破壊等してもよい。また、タンパク質に複数のアイソザイムが存在する場合、結果としてタンパク質の活性が低下する限り、複数のアイソザイムの全ての活性を低下させてもよく、一部のみの活性を低下させてもよい。すなわち、例えば、それらのアイソザイムをコードする複数の遺伝子の全てを破壊等してもよく、一部のみを破壊等してもよい。
　タンパク質の活性が低下したことは、同タンパク質の活性を測定することで確認できる。タンパク質の活性が低下したことは、同タンパク質をコードする遺伝子の発現が低下したことや、遺伝子が破壊されたことを確認することによっても、確認できる。
　上記したタンパク質の活性を低下させる手法は、任意のタンパク質、例えば目的のＬ－アミノ酸の生合成経路から分岐して目的のＬ－アミノ酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素、の活性低下や、任意の遺伝子、例えばそれら任意のタンパク質をコードする遺伝子、の発現低下に利用できる。
＜１－５＞タンパク質の活性を増大させる手法
　以下に、タンパク質の活性を増大させる手法について説明する。
　「タンパク質の活性が増大する」とは、同タンパク質の細胞当たりの活性が野生株や親株等の非改変株に対して増大していることを意味する。なお、「タンパク質の活性が増大する」ことを、「タンパク質の活性が増強される」ともいう。「タンパク質の活性が増大する」とは、具体的には、非改変株と比較して、同タンパク質の細胞当たりの分子数が増加していること、および／または、同タンパク質の分子当たりの機能が増大していることをいう。すなわち、「タンパク質の活性が増大する」という場合の「活性」とは、タンパク質の触媒活性に限られず、タンパク質をコードする遺伝子の転写量（ｍＲＮＡ量）または翻訳量（タンパク質の量）を意味してもよい。また、「タンパク質の活性が増大する」とは、もともと標的のタンパク質の活性を有する菌株において同タンパク質の活性を増大させることだけでなく、もともと標的のタンパク質の活性が存在しない菌株に同タンパク質の活性を付与することを含む。また、結果としてタンパク質の活性が増大する限り、宿主が本来有する標的のタンパク質の活性を低下または消失させた上で、好適な標的のタンパク質の活性を付与してもよい。
　タンパク質の活性は、非改変株と比較して増大していれば特に制限されないが、例えば、非改変株と比較して、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。また、非改変株が標的のタンパク質の活性を有していない場合は、同タンパク質をコードする遺伝子を導入することにより同タンパク質が生成されていればよいが、例えば、同タンパク質はその酵素活性が測定できる程度に生産されていてよい。
　タンパク質の活性が増大するような改変は、例えば、同タンパク質をコードする遺伝子の発現を上昇させることによって達成される。なお、「遺伝子の発現が上昇する」ことを、「遺伝子の発現が増強される」ともいう。遺伝子の発現は、例えば、非改変株と比較して、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。また、「遺伝子の発現が上昇する」とは、もともと標的の遺伝子が発現している菌株において同遺伝子の発現量を上昇させることだけでなく、もともと標的の遺伝子が発現していない菌株において、同遺伝子を発現させることを含む。すなわち、「遺伝子の発現が上昇する」とは、例えば、標的の遺伝子を保持しない菌株に同遺伝子を導入し、同遺伝子を発現させることを含む。
　遺伝子の発現の上昇は、例えば、遺伝子のコピー数を増加させることにより達成できる。
　遺伝子のコピー数の増加は、宿主の染色体へ同遺伝子を導入することにより達成できる。染色体への遺伝子の導入は、例えば、相同組み換えを利用して行うことができる（MillerI, J. H. Experiments in Molecular Genetics, 1972, Cold Spring Harbor Laboratory）。遺伝子は、１コピーのみ導入されてもよく、２コピーまたはそれ以上導入されてもよい。例えば、染色体上に多数のコピーが存在する配列を標的として相同組み換えを行うことで、染色体へ遺伝子の多数のコピーを導入することができる。染色体上に多数のコピーが存在する配列としては、反復DNA配列（repetitive DNA）、トランスポゾンの両端に存在するインバーテッド・リピートが挙げられる。また、目的物質の生産に不要な遺伝子等の染色体上の適当な配列を標的として相同組み換えを行ってもよい。相同組み換えは、例えば、Redドリブンインテグレーション(Red-driven integration)法（Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97:6640-6645 (2000)）等の直鎖状ＤＮＡを用いる方法、温度感受性複製起点を含むプラスミドを用いる方法、接合伝達可能なプラスミドを用いる方法、宿主内で機能する複製起点を持たないスイサイドベクターを用いる方法、またはファージを用いたtransduction法により行うことができる。また、遺伝子は、トランスポゾンやMini-Muを用いて染色体上にランダムに導入することもできる（特開平2-109985号公報、US5,882,888、EP805867B1）。
　染色体上に標的遺伝子が導入されたことの確認は、同遺伝子の全部又は一部と相補的な配列を持つプローブを用いたサザンハイブリダイゼーション、又は同遺伝子の配列に基づいて作成したプライマーを用いたPCR等によって確認できる。
　また、遺伝子のコピー数の増加は、同遺伝子を含むベクターを宿主に導入することによっても達成できる。例えば、標的遺伝子を含むＤＮＡ断片を、宿主で機能するベクターと連結して同遺伝子の発現ベクターを構築し、当該発現ベクターで宿主を形質転換することにより、同遺伝子のコピー数を増加させることができる。標的遺伝子を含むＤＮＡ断片は、例えば、標的遺伝子を有する微生物のゲノムＤＮＡを鋳型とするＰＣＲにより取得できる。ベクターとしては、宿主の細胞内において自律複製可能なベクターを用いることができる。ベクターは、マルチコピーベクターであるのが好ましい。また、形質転換体を選択するために、ベクターは抗生物質耐性遺伝子などのマーカーを有することが好ましい。ベクターは、例えば、細菌プラスミド由来のベクター、酵母プラスミド由来のベクター、バクテリオファージ由来のベクター、コスミド、またはファージミド等であってよい。コリネ型細菌で自律複製可能なベクターとして、具体的には、例えば、pHM1519(Agric, Biol. Chem., 48, 2901-2903(1984))；pAM330（Agric. Biol. Chem., 48, 2901-2903(1984)）；これらを改良した薬剤耐性遺伝子を有するプラスミド；特開平3-210184号公報に記載のプラスミドpCRY30；特開平2-72876号公報及び米国特許5,185,262号明細書公報に記載のプラスミドpCRY21、pCRY2KE、pCRY2KX、pCRY31、pCRY3KE及びpCRY3KX；特開平1-191686号公報に記載のプラスミドpCRY2およびpCRY3；特開昭58-192900号公報に記載のpAJ655、pAJ611及びpAJ1844；特開昭57-134500号公報に記載のpCG1；特開昭58-35197号公報に記載のpCG2；特開昭57-183799号公報に記載のpCG4およびpCG11が挙げられる。
　遺伝子を導入する場合、遺伝子は、発現可能に本発明の細菌に保持されていればよい。具体的には、遺伝子は、本発明の細菌で機能するプロモーター配列による制御を受けて発現するように導入されていればよい。プロモーターは、宿主由来のプロモーターであってもよく、異種由来のプロモーターであってもよい。プロモーターは、導入する遺伝子の固有のプロモーターであってもよく、他の遺伝子のプロモーターであってもよい。プロモーターとしては、例えば、後述するような、より強力なプロモーターを利用してもよい。
　遺伝子の下流には、転写終結用のターミネーターを配置することができる。ターミネーターは、本発明の細菌において機能するものであれば特に制限されない。ターミネーターは、宿主由来のターミネーターであってもよく、異種由来のターミネーターであってもよい。ターミネーターは、導入する遺伝子の固有のターミネーターであってもよく、他の遺伝子のターミネーターであってもよい。ターミネーターとして、具体的には、例えば、trpAターミネーターが挙げられる。
　各種微生物において利用可能なベクター、プロモーター、ターミネーターに関しては、例えば「微生物学基礎講座８　遺伝子工学、共立出版、1987年」に詳細に記載されており、それらを利用することが可能である。
　また、２またはそれ以上の遺伝子を導入する場合、各遺伝子が、発現可能に本発明の細菌に保持されていればよい。例えば、各遺伝子は、全てが単一の発現ベクター上に保持されていてもよく、全てが染色体上に保持されていてもよい。また、各遺伝子は、複数の発現ベクター上に別々に保持されていてもよく、単一または複数の発現ベクター上と染色体上とに別々に保持されていてもよい。また、２またはそれ以上の遺伝子でオペロンを構成して導入してもよい。「２またはそれ以上の遺伝子を導入する場合」としては、例えば、２またはそれ以上の酵素をそれぞれコードする遺伝子を導入する場合、単一の酵素を構成する２またはそれ以上のサブユニットをそれぞれコードする遺伝子を導入する場合、およびそれらの組み合わせが挙げられる。
　導入される遺伝子は、宿主で機能するタンパク質をコードするものであれば特に制限されない。導入される遺伝子は、宿主由来の遺伝子であってもよく、異種由来の遺伝子であってもよい。導入される遺伝子は、例えば、同遺伝子の塩基配列に基づいて設計したプライマーを用い、同遺伝子を有する生物のゲノムDNAや同遺伝子を搭載するプラスミド等を鋳型として、PCRにより取得することができる。また、導入される遺伝子は、例えば、同遺伝子の塩基配列に基づいて全合成してもよい（Gene, 60(1), 115-127 (1987)）。
　なお、タンパク質が複数のサブユニットからなる複合体として機能する場合、結果としてタンパク質の活性が増大する限り、それら複数のサブユニットの全てを改変してもよく、一部のみを改変してもよい。すなわち、例えば、遺伝子の発現を上昇させることによりタンパク質の活性を増大させる場合、それらのサブユニットをコードする複数の遺伝子の全ての発現を増強してもよく、一部の発現のみを増強してもよい。通常は、それらのサブユニットをコードする複数の遺伝子の全ての発現を増強するのが好ましい。また、複合体を構成する各サブユニットは、複合体が目的のタンパク質の機能を有する限り、１種の生物由来であってもよく、２種またはそれ以上の異なる生物由来であってもよい。すなわち、例えば、複数のサブユニットをコードする、同一の生物由来の遺伝子を宿主に導入してもよく、それぞれ異なる生物由来の遺伝子を宿主に導入してもよい。
　また、遺伝子の発現の上昇は、遺伝子の転写効率を向上させることにより達成できる。遺伝子の転写効率の向上は、例えば、染色体上の遺伝子のプロモーターをより強力なプロモーターに置換することにより達成できる。「より強力なプロモーター」とは、遺伝子の転写が、もともと存在している野生型のプロモーターよりも向上するプロモーターを意味する。コリネ型細菌で利用できるより強力なプロモーターとしては、人為的に設計変更されたP54-6プロモーター（Appl.Microbiol.Biotechnolo., 53, 674-679(2000)）、コリネ型細菌内で酢酸、エタノール、ピルビン酸等で誘導できるpta、aceA、aceB、adh、amyEプロモーター、コリネ型細菌内で発現量が多い強力なプロモーターであるcspB、SOD、tuf（EF-Tu）プロモーター（Journal of Biotechnology 104 (2003) 311-323, Appl Environ Microbiol. 2005 Dec;71(12):8587-96.）、lacプロモーター、tacプロモーター、trcプロモーターが挙げられる。また、より強力なプロモーターとしては、各種レポーター遺伝子を用いることにより、在来のプロモーターの高活性型のものを取得してもよい。例えば、プロモーター領域内の-35、-10領域をコンセンサス配列に近づけることにより、プロモーターの活性を高めることができる（国際公開第00/18935号）。高活性型プロモーターとしては、各種tac様プロモーター（Katashkina JI et al. Russian Federation Patent application 2006134574）やpnlp8プロモーター（WO2010/027045）が挙げられる。プロモーターの強度の評価法および強力なプロモーターの例は、Goldsteinらの論文（Prokaryotic promoters in biotechnology. Biotechnol. Annu. Rev., 1, 105-128 (1995)）等に記載されている。
　また、遺伝子の発現の上昇は、遺伝子の翻訳効率を向上させることにより達成できる。遺伝子の翻訳効率の向上は、例えば、染色体上の遺伝子のシャインダルガノ（ＳＤ）配列（リボソーム結合部位（ＲＢＳ）ともいう）をより強力なＳＤ配列に置換することにより達成できる。「より強力なＳＤ配列」とは、ｍＲＮＡの翻訳が、もともと存在している野生型のＳＤ配列よりも向上するＳＤ配列を意味する。より強力なＳＤ配列としては、例えば、ファージＴ７由来の遺伝子１０のＲＢＳが挙げられる(Olins P. O. et al, Gene, 1988, 73, 227-235)。さらに、ＲＢＳと開始コドンとの間のスペーサー領域、特に開始コドンのすぐ上流の配列(5'-UTR)における数個のヌクレオチドの置換、あるいは挿入、あるいは欠失がｍＲＮＡの安定性および翻訳効率に非常に影響を及ぼすことが知られており、これらを改変することによっても遺伝子の翻訳効率を向上させることができる。
　これら発現制御領域の改変は、例えば、温度感受性ベクターを用いた方法や、Ｒｅｄドリブンインテグレーション法（WO2005/010175）により行うことができる。
　遺伝子の翻訳効率の向上は、例えば、コドンの改変によっても達成できる。エシェリヒア・コリ等において、ｍＲＮＡ分子の集団内に見出される６１種のアミノ酸コドン間には明らかなコドンの偏りが存在し、あるｔＲＮＡの存在量は、対応するコドンの使用頻度と直接比例するようである（Kane, J.F., Curr. Opin. Biotechnol., 6(5), 494-500 (1995)）。すなわち、過剰のレアコドンを含むｍＲＮＡが大量に存在すると翻訳の問題が生じうる。近年の研究によれば、特に、ＡＧＧ／ＡＧＡ、ＣＵＡ、ＡＵＡ、ＣＧＡ、又はＣＣＣコドンのクラスターが、合成されたタンパク質の量および質の両方を低下させ得ることが示唆されている。このような問題は、特に異種遺伝子の発現の際に生じうる。よって、遺伝子の異種発現を行う場合等には、遺伝子中に存在するレアコドンを、より高頻度で利用される同義コドンに置き換えることにより、遺伝子の翻訳効率を向上させることができる。コドンの置換は、例えば、ＤＮＡの目的の部位に目的の変異を導入する部位特異的変異法により行うことができる。部位特異的変異法としては、PCRを用いる方法（Higuchi, R., 61, in PCR technology, Erlich, H. A. Eds., Stockton press (1989)；Carter, P., Meth. in Enzymol., 154, 382 (1987)）や、ファージを用いる方法（Kramer,W. and Frits, H. J., Meth. in Enzymol., 154, 350 (1987)；Kunkel, T. A. et al., Meth. in Enzymol., 154, 367 (1987)）が挙げられる。また、コドンが置換された遺伝子断片を全合成してもよい。種々の生物におけるコドンの使用頻度は、「コドン使用データベース」（http://www.kazusa.or.jp/codon; Nakamura, Y. et al, Nucl. Acids Res., 28, 292 (2000)）に開示されている。
　また、遺伝子の発現の上昇は、遺伝子の発現を上昇させるようなレギュレーターを増幅すること、または、遺伝子の発現を低下させるようなレギュレーターを欠失または弱化させることによっても達成できる。
　上記のような遺伝子の発現を上昇させる手法は、単独で用いてもよく、任意の組み合わせで用いてもよい。
　また、タンパク質の活性が増大するような改変は、例えば、タンパク質の比活性を増強することによっても達成できる。比活性の増強には、フィードバック阻害の低減および解除も含まれる。比活性が増強されたタンパク質は、例えば、種々の生物を探索し取得することができる。また、在来のタンパク質に変異を導入することで高活性型のものを取得してもよい。導入される変異は、例えば、タンパク質の１若しくは数個の位置での１又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、又は付加されるものであってよい。変異の導入は、例えば、上述したような部位特異的変異法により行うことができる。また、変異の導入は、例えば、突然変異処理により行ってもよい。突然変異処理としては、Ｘ線の照射、紫外線の照射、ならびにＮ－メチル－Ｎ'－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）、およびメチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。また、in vitroでDNAを直接ヒドロキシルアミンで処理し、ランダム変異を誘発してもよい。比活性の増強は、単独で用いてもよく、上記のような遺伝子の発現を増強させる手法と任意に組み合わせて用いてもよい。
　形質転換の方法は特に限定されず、従来知られた方法を用いることができる。例えば、エシェリヒア・コリ K-12について報告されているような、受容菌細胞を塩化カルシウムで処理してDNAの透過性を増す方法（Mandel, M. and Higa, A.,J. Mol. Biol. 1970, 53, 159-162）や、バチルス・ズブチリスについて報告されているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを調製してDNAを導入する方法（Duncan, C. H., Wilson, G. A. and Young, F. E.., 1997. Gene 1: 153-167）を用いることができる。あるいは、バチルス・ズブチリス、放線菌類、及び酵母について知られているような、DNA受容菌の細胞を、組換えDNAを容易に取り込むプロトプラストまたはスフェロプラストの状態にして組換えDNAをDNA受容菌に導入する方法（Chang, S.and Choen, S.N., 1979.Mol. Gen. Genet. 168: 111-115; Bibb, M. J., Ward, J. M. and Hopwood, O. A. 1978.Nature 274: 398-400; Hinnen, A., Hicks, J. B. and Fink, G. R. 1978. Proc. Natl.Acad. Sci. USA 75: 1929-1933）も応用できる。あるいは、コリネ型細菌について報告されているような、電気パルス法（特開平2-207791）を利用することもできる。
　タンパク質の活性が増大したことは、同タンパク質の活性を測定することで確認できる。
　タンパク質の活性が増大したことは、同タンパク質をコードする遺伝子の発現が上昇したことを確認することによっても、確認できる。遺伝子の発現が上昇したことは、同遺伝子の転写量が上昇したことを確認することや、同遺伝子から発現するタンパク質の量が上昇したことを確認することにより確認できる。
　遺伝子の転写量が上昇したことの確認は、同遺伝子から転写されるmRNAの量を野生株または親株等の非改変株と比較することによって行うことができる。mRNAの量を評価する方法としてはノーザンハイブリダイゼーション、RT-PCR等が挙げられる(Sambrook, J., et al., Molecular Cloning A Laboratory Manual/Third Edition, Cold spring Harbor Laboratory Press, Cold spring Harbor (USA), 2001）。mRNAの量は、非改変株と比較して、例えば、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。
　タンパク質の量が上昇したことの確認は、抗体を用いてウェスタンブロットによって行うことができる（Molecular cloning(Cold spring Harbor Laboratory Press, Cold spring Harbor (USA), 2001)）。タンパク質の量は、非改変株と比較して、例えば、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。
　上記したタンパク質の活性を増大させる手法は、任意のタンパク質、例えばＬ－アミノ酸生合成系酵素、の活性増強や、任意の遺伝子、例えばそれら任意のタンパク質をコードする遺伝子、の発現増強に利用できる。
＜２＞目的物質の製造法
＜２－１＞目的物質の製造法
　本発明の方法は、本発明の細菌をキシロースを含有する培地で培養して目的物質を該培地中又は該細菌の菌体内に生成蓄積すること、および該培地又は菌体より目的物質を採取することを含む、目的物質の製造法である。本発明においては、１種の目的物質が製造されてもよく、２種またはそれ以上の目的物質が製造されてもよい。
　使用する培地は、キシロースを含有し、本発明の細菌が増殖でき、目的物質が生産される限り、特に制限されない。培地としては、例えば、細菌等の微生物の培養に用いられる通常の培地を用いることができる。培地は、キシロースに加えて、炭素源、窒素源、リン酸源、硫黄源、その他の各種有機成分や無機成分から選択される成分を必要に応じて含有してよい。培地成分の種類や濃度は、使用する細菌の種類や製造する目的物質の種類等の諸条件に応じて適宜設定してよい。
　キシロースとしては、精製されたキシロース等の純粋なキシロースを用いてもよく、キシロースとそれ以外の成分を含有する混合物を用いてもよい。そのような混合物としては、植物バイオマスの加水分解物が挙げられる。植物バイオマスは、キシロースを構成糖として含有するものであれば特に制限されない。植物バイオマスとしては、木質系バイオマスや草本系バイオマスが挙げられる。植物バイオマスとして、具体的には、例えば、稲わら、籾殻、サトウキビバガスが挙げられる。植物バイオマスを、水熱分解処理、濃酸加水分解、希酸加水分解、セルラーゼ等の酵素による加水分解、アルカリ処理等の処理に供することにより、キシロースを含有する処理物が得られる。そのような処理物は、そのまま、あるいは適宜精製等して、炭素源として利用してよい。
　植物バイオマスを処理する方法としては、水熱分解処理が好ましい。植物バイオマスは、そのまま、あるいは適宜、蒸煮や爆砕等の前処理を行ってから、水熱分解処理等の処理に供してよい。例えば、植物バイオマスは、５ｍｍ以下に粉砕して、水熱分解処理等の処理に供してもよい。水熱分解は、例えば、好ましくは１７５～２４０℃、より好ましくは２００～２３０℃の加圧熱水を用いて行うことができる。ヘミセルロース成分は約１４０℃以上で、セルロースは約２３０℃以上で、リグニン成分は約１４０℃以上で溶解するため、ヘミセルロース成分を十分に溶解させるためには、上記範囲の温度が好ましい。
　上記のような水熱分解処理は、植物バイオマスを加圧熱水と対向接触させることにより行うことができる。このような処理は、特許第４４３６４２９号公報、特許４５２４３５１号公報、又は特許第４４２７５８３号公報に記載された装置を用いて行うことができる。植物バイオマスの水熱分解処理によって、リグニン成分及びヘミセルロース成分は、植物バイオマスから熱水中に移行し、セルロース成分は固形分として残る。
　また、水熱分解処理の反応圧力は、装置内部が加圧熱水の状態となるよう、各温度の水の飽和蒸気圧より更に０．１～０．５ＭＰａ高い圧力とするのが好ましい。反応時間は通常２０分以下、好ましくは３～１５分である。
　続いて、熱水を固形分から分離し、熱水中のヘミセルロースを糖化処理する。ヘミセルロースの糖化は、糖化酵素を用いた酵素分解、又は硫酸を用いた硫酸分解により行うことができるが、本発明においては、酵素分解が好ましい。
　糖化酵素は、ヘミセルロースを分解してキシロースを生成するものであれば特に制限されない。糖化酵素として、具体的には、ヘミセルラーゼが挙げられる。ヘミセルラーゼとは、ヘミセルロースに含まれるグリコシド結合の加水分解を触媒する酵素の総称である。ヘミセルロースとは、陸上植物細胞の細胞壁を構成する多糖類のうち、セルロースとペクチン以外のものをいい、ヘミセルロースの主成分はキシランである。キシランは、キシロースを構成糖とする主鎖にアラビノース等の側鎖が結合してなるヘテロ多糖である。ヘミセルラーゼの主成分は、エンド-1,4-β-キシラナーゼ（EC 3.2.1.8）及びβ-1,4-キシロシダーゼ（EC 3.2.1.37）等であるが、その他のグルコシド結合加水分解酵素も含まれている。市販のヘミセルラーゼとしては、Cellic Htec（Novozyme）等が挙げられる。また、セルラーゼであるSpezyme CP（Genencor、Trichoderma reesei由来）、及び、β‐グルコシダーゼであるNovozyme 188（Novozyme、Aspergillus niger由来）等をヘミセルラーゼとして用いてもよい。ヘミセルロースにこれらの酵素を作用させると、キシロース、アラビノース等が生成する。また、熱水中にヘミセルロースだけでなくセルロースが移行又は混入することがあり、糖化処理によってグルコースが生成する場合がある。本発明においては、キシロースに加えて、糖化処理により得られたグルコース等の副生物を炭素源として用いてもよい。
　酵素反応は、水や緩衝液等の適当な水性溶媒中で行うことができる。酵素反応に用いる溶媒は、例えば、水熱処理に使用した水そのものであってもよい。反応温度及びｐＨ等の反応条件は、市販酵素に添付された説明書の記載にしたがって、又は予備実験等によって、適宜設定すればよい。例えば、前記Spezyme CP、及び、Novozyme 188を用いる場合の反応条件としては、45～60℃、pH4.5～6.5の条件が挙げられる。酵素量は、例えば、基質固形量当り、通常20～120FPU（filter paper unit）であってよい。反応時間は、例えば、通常24～144時間であってよい。酵素反応は、静置で行ってもよく、撹拌しながら行ってもよい。また、酵素反応に先立って、脱リグニンやヘミセルロースの部分分解等の前処理を行ってもよい。
　糖化を硫酸分解により行う場合、硫酸濃度は、通常０．１～５重量％、好ましくは１～４重量％であってよい。分解温度は、通常１００～１４０℃、好ましくは約１２０℃前後であってよい。分解時間は、通常３０分～３時間、好ましくは１時間前後であってよい。分解後、硫酸はイオン交換樹脂処理等により除去することができる。
　糖化処理により得られたキシロースを含有する糖液は、そのまま、あるいは適宜、濃縮、希釈、乾燥、分画、精製等の処理に供してから、炭素源として利用してよい。例えば、糖液から、キシロース等の成分を所望の程度に分離精製して炭素源として利用することができる。
　また、糖化処理により得られる糖液には、微生物の生育及び代謝を阻害する物質が含まれうる。このような阻害物質は、主として、糖以外の分子量３０００以下の不揮発性の物質である。したがって、糖液は、このような阻害物質を除去する処理に供してから、炭素源として利用するのが好ましい。このような阻害物質を除去する処理としては、吸着剤処理、ゲルろ過、膜処理等が挙げられる。糖液は、そのまま、あるいは適宜、濃縮または希釈等してから、阻害物質を除去する処理に供してよい。
　吸着剤処理に利用できる吸着剤としては、例えば、活性炭、イオン交換樹脂、合成吸着樹脂、ゼオライト、シリカゲルが挙げられる。吸着剤は、上記のような阻害物質を選択的に吸着するものであることが好ましい。吸着剤処理は、バッチにより、又はカラムを用いて行うことができるが、カラムを用いることが好ましい。バッチで行う場合は、糖液を入れた容器に吸着剤を入れた後、吸着剤と糖液を分離する。カラムを用いる場合は、吸着剤を充填したカラムに糖液を流し、必要に応じてカラムに洗浄液を流し、貫流液（非吸着画分）を集める。吸着剤処理は、１回のみ行ってもよく、２回又はそれ以上繰返してもよい。また、吸着剤処理には、１種の吸着剤を利用してもよく、２種又はそれ以上の吸着剤を併用してもよい。
　阻害物質が除去された糖液は、そのまま、あるいは適宜、濃縮、希釈、乾燥、分画、精製等の処理に供してから、炭素源として利用してよい。
　また、糖化処理により生成した各種成分は、用途に応じて、さらに化学反応又は酵素反応によって異性化又は分解等してもよい。
　尚、バイオマス原料の水熱処理の後、熱水を分離した残りの固形分を利用してもよい。すなわち、固形分中のセルロースをセルラーゼ等で酵素処理すれば、グルコース等の６炭糖を含む糖液が得られる。キシロースに加えて、このような糖液またはその処理物を炭素源として利用してもよい。
　本発明の方法において、キシロースは、唯一炭素源（sole carbon source）として利用されてもよく、そうでなくてもよい。すなわち、本発明の方法においては、キシロースに加えて、他の炭素源を併用してもよい。他の炭素源は、本発明の細菌が資化して目的物質を生成し得るものであれば、特に限定されない。他の炭素源として、具体的には、例えば、グルコース、フルクトース、スクロース、ラクトース、ガラクトース、アラビノース、廃糖蜜、澱粉加水分解物、バイオマスの加水分解物等の糖類、酢酸、フマル酸、クエン酸、コハク酸、リンゴ酸等の有機酸類、グリセロール、粗グリセロール、エタノール等のアルコール類、脂肪酸類が挙げられる。他の炭素源を用いる場合には、総炭素源中のキシロースの比率は、例えば、５重量％以上、１０重量％以上、２０重量％以上、好ましくは３０重量％以上、より好ましくは５０重量％以上であってよい。他の炭素源としては、１種の炭素源を用いてもよく、２種またはそれ以上の炭素源を組み合わせて用いてもよい。
　培地中での炭素源の濃度は、本発明の細菌が増殖でき、目的物質が生産される限り、特に制限されない。培地中での炭素源の濃度は、目的物質の生産が阻害されない範囲で可能な限り高くするのが好ましい。培地中での炭素源の初発濃度は、例えば、通常1～30 %(W/V)、好ましくは3～10 %(W/V)であってよい。また、発酵の進行に伴う炭素源の消費に応じて、炭素源を追加で添加してもよい。
　窒素源として、具体的には、例えば、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム等のアンモニウム塩、ペプトン、酵母エキス、肉エキス、大豆タンパク質分解物等の有機窒素源、アンモニア、ウレアが挙げられる。pH調整に用いられるアンモニアガスやアンモニア水を窒素源として利用してもよい。窒素源としては、１種の窒素源を用いてもよく、２種またはそれ以上の窒素源を組み合わせて用いてもよい。
　リン酸源として、具体的には、例えば、リン酸２水素カリウム、リン酸水素２カリウム等のリン酸塩、ピロリン酸等のリン酸ポリマーが挙げられる。リン酸源としては、１種のリン酸源を用いてもよく、２種またはそれ以上のリン酸源を組み合わせて用いてもよい。
　硫黄源として、具体的には、例えば、硫酸塩、チオ硫酸塩、亜硫酸塩等の無機硫黄化合物、システイン、シスチン、グルタチオン等の含硫アミノ酸が挙げられる。硫黄源としては、１種の硫黄源を用いてもよく、２種またはそれ以上の硫黄源を組み合わせて用いてもよい。
　その他の各種有機成分や無機成分として、具体的には、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム等の無機塩類；鉄、マンガン、マグネシウム、カルシウム等の微量金属類；ビタミンB1、ビタミンB2、ビタミンB6、ニコチン酸、ニコチン酸アミド、ビタミンB12等のビタミン類；アミノ酸類；核酸類；これらを含有するペプトン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆タンパク質分解物等の有機成分が挙げられる。その他の各種有機成分や無機成分としては、１種の成分を用いてもよく、２種またはそれ以上の成分を組み合わせて用いてもよい。
　また、生育にアミノ酸などを要求する栄養要求性変異株を使用する場合には、培地に要求される栄養素を補添することが好ましい。例えば、Ｌ－リジン生産菌は、Ｌ－リジン生合成経路が強化され、Ｌ－リジン分解能が弱化されている場合が多い。よって、そのようなＬ－リジン生産菌を培養する場合には、例えば、Ｌ－スレオニン、Ｌ－ホモセリン、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－メチオニンから選ばれる１またはそれ以上のアミノ酸を培地に補添するのが好ましい。
　また、例えば、コリネ型細菌によりＬ－グルタミン酸を製造する場合は、培地中のビオチン量を制限することや、培地に界面活性剤またはペニシリンを添加することが好ましい。また、培養時の発泡を抑えるために、培地には市販の消泡剤を適量添加しておくことが好ましい。
　培養条件は、本発明の細菌が増殖でき、目的物質が生産される限り、特に制限されない。培養は、例えば、コリネ型細菌の培養に用いられる通常の条件で行うことができる。培養条件は、使用する細菌の種類や製造する目的物質の種類等の諸条件に応じて適宜設定してよい。
　培養は、液体培地を用いて行うことができる。培養の際には、本発明の細菌を寒天培地等の固体培地で培養したものを直接液体培地に接種してもよく、本発明の細菌を液体培地で種培養したものを本培養用の液体培地に接種してもよい。すなわち、培養は、種培養と本培養とに分けて行われてもよい。その場合、種培養と本培養の培養条件は、同一であってもよく、そうでなくてもよい。培養開始時に培地に含有される本発明の細菌の量は特に制限されない。例えば、ＯＤ６６０＝４～８の種培養液を、培養開始時に、本培養用の培地に対して０．１質量％～３０質量％、好ましくは１質量％～１０質量％、添加してよい。
　培養は、回分培養（batch culture）、流加培養（Fed-batch culture）、連続培養（continuous culture）、またはそれらの組み合わせにより実施することができる。なお、培養開始時の培地を、「初発培地」ともいう。また、流加培養または連続培養において培養系（発酵槽）に供給する培地を、「流加培地」ともいう。また、流加培養または連続培養において培養系に流加培地を供給することを、「流加」ともいう。なお、培養が種培養と本培養とに分けて行われる場合、例えば、種培養と本培養を、共に回分培養で行ってもよい。また、例えば、種培養を回分培養で行い、本培養を流加培養または連続培養で行ってもよい。
　本発明において、各培地成分は、初発培地、流加培地、またはその両方に含有されていてよい。初発培地に含有される成分の種類は、流加培地に含有される成分の種類と、同一であってもよく、そうでなくてもよい。また、初発培地に含有される各成分の濃度は、流加培地に含有される各成分の濃度と、同一であってもよく、そうでなくてもよい。また、含有する成分の種類および／または濃度の異なる２種またはそれ以上の流加培地を用いてもよい。例えば、複数回の流加が間欠的に行われる場合、各流加培地に含有される成分の種類および／または濃度は、同一であってもよく、そうでなくてもよい。
　培地中のキシロース濃度は、本発明の細菌がキシロースを炭素源として利用できる限り、特に制限されない。キシロースは、例えば、１０w/v%以下、好ましくは５w/v%以下、より好ましくは２w/v%以下の濃度で培地に含有されてよい。また、キシロースは、例えば、０．２w/v%以上、好ましくは０．５w/v%以上、より好ましくは１．０w/v%以上の濃度で培地に含有されてよい。キシロースは、初発培地、流加培地、またはその両方に、上記例示した濃度範囲で含有されていてよい。
　また、キシロースが流加培地に含有される場合、キシロースは、例えば、流加後の培地中のキシロース濃度が、５w/v%以下、好ましくは２w/v%以下、より好ましくは１w/v%以下となるように、流加培地に含有されてもよい。また、キシロースが流加培地に含有される場合、キシロースは、例えば、流加後の培地中のキシロース濃度が、０．０１w/v%以上、好ましくは０．０２w/v%以上、より好ましくは０．０５w/v%以上となるように、流加培地に含有されてもよい。
　キシロースは、唯一炭素源として利用される場合に、上記例示した濃度範囲で含有されていてよい。また、キシロースは、他の炭素源を併用する場合に、上記例示した濃度範囲で含有されてもよい。また、キシロースは、他の炭素源を併用する場合に、例えば、総炭素源中のキシロースの比率等に応じて、上記例示した濃度範囲を適宜修正した濃度範囲で含有されてもよい。
　キシロースは、培養の全期間において一定の濃度範囲で培地に含有されていてもよく、そうでなくてもよい。例えば、一部の期間、キシロースが不足していてもよい。「不足する」とは、要求量を満たさないことをいい、例えば、培地中の濃度がゼロとなることであってよい。「一部の期間」とは、例えば、培養の全期間の内の、１％以下の期間、５％以下の期間、１０％以下の期間、２０％以下の期間、３０％以下の期間、または５０％以下の期間であってよい。なお、「培養の全期間」とは、培養が種培養と本培養とに分けて行われる場合には、本培養の全期間を意味してよい。キシロースが不足する期間には、他の炭素源が充足されているのが好ましい。このように、一部の期間、キシロースが不足していても、キシロースを含有する培地での培養期間が存在する限り、「キシロースを含有する培地中で細菌を培養する」ことに含まれる。
　キシロース等の各種成分の濃度は、ガスクロマトグラフィー（Hashimoto, K. et al. 1996. Biosci. Biotechnol. Biochem. 70:22-30）やHPLC（Lin, J. T. et al. 1998. J. Chromatogr. A. 808: 43-49）により測定することができる。
　培養は、例えば、好気的に行うことができる。例えば、培養は、通気培養または振盪培養で行うことができる。酸素濃度は、例えば、飽和酸素濃度の5～50％、好ましくは10％程度に制御されてよい。培地のpHは、例えば、pH 3～10、好ましくはpH 4.0～9.5であってよい。培養中、必要に応じて培地のpHを調整することができる。培地のpHは、アンモニアガス、アンモニア水、炭酸ナトリウム、重炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、重炭酸カリウム、炭酸マグネシウム、水酸化ナトリウム、水酸化カルシウム、水酸化マグネシウム等の各種アルカリ性または酸性物質を用いて調整することができる。培養温度は、例えば、20～45℃、好ましくは25℃～37℃であってよい。培養期間は、例えば、10時間～120時間であってよい。培養は、例えば、培地中の炭素源が消費されるまで、あるいは本発明の細菌の活性がなくなるまで、継続してもよい。このような条件下で本発明の細菌を培養することにより、菌体内および／または培地中に目的物質が蓄積する。
　流加培養または連続培養においては、流加は、培養の全期間を通じて継続されてもよく、培養の一部の期間においてのみ継続されてもよい。また、流加培養または連続培養においては、複数回の流加が間欠的に行われてもよい。
　複数回の流加が間欠的に行われる場合、１回当たりの流加の継続時間が、複数回の流加の合計時間の、例えば30％以下、好ましくは20％以下、より好ましくは10％以下となるように、流加の開始と停止を繰り返してもよい。
　また、複数回の流加が間欠的に行われる場合、２回目以降の流加を、その直前の流加停止期において発酵培地中の炭素源が枯渇したときに開始されるように制御することにより、発酵培地中の炭素源濃度を自動的に低レベルに維持することもできる（米国特許5,912,113号明細書）。炭素源の枯渇は、例えば、pHの上昇または溶存酸素濃度の上昇により検出できる。
　連続培養においては、培養液の引き抜きは、培養の全期間を通じて継続されてもよく、培養の一部の期間においてのみ継続されてもよい。また、連続培養においては、複数回の培養液の引き抜きが間欠的に行われてもよい。培養液の引き抜きと流加は、同時に行われてもよく、そうでなくてもよい。例えば、培養液の引き抜きを行った後で流加を行ってもよく、流加を行った後で培養液の引き抜きを行ってもよい。引き抜く培養液量は、流加させる培地量と同量であるのが好ましい。ここで、「同量」とは、例えば、流加させる培地量に対して９３～１０７％の量であってよい。
　培養液を連続的に引き抜く場合には、流加と同時に、または流加の開始後に、引き抜きを開始するのが好ましい。例えば、流加の開始後５時間以内、好ましくは３時間以内、より好ましくは１時間以内に、引き抜きを開始してよい。
　培養液を間欠的に引き抜く場合には、予定した目的物質濃度に到達したときに、培養液を一部引き抜いて目的物質を回収し、新たに培地を流加して培養を継続するのが好ましい。
　また、引き抜かれた培養液から、Ｌ目的物質を回収し、菌体を含むろ過残留物を発酵槽中に再循環させることにより、菌体を再利用することもできる（フランス特許2669935号明細書）。
　また、Ｌ－グルタミン酸を製造する場合、Ｌ－グルタミン酸が析出する条件に調整された液体培地を用いて、培地中にＬ－グルタミン酸を析出させながら培養を行うことも出来る。Ｌ－グルタミン酸が析出する条件としては、例えば、ｐＨ５．０～３．０、好ましくはｐＨ４．９～３．５、さらに好ましくはｐＨ４．９～４．０、特に好ましくはｐＨ４．７付近の条件が挙げられる（欧州特許出願公開第1078989号明細書）。尚、培養は、その全期間において上記ｐＨで行われてもよく、一部の期間のみ上記ｐＨで行われてもよい。「一部の期間」とは、例えば、培養の全期間の５０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上、９５％以上、または９９％以上の期間であってよい。
　また、Ｌ－リジン等の塩基性アミノ酸を製造する場合、重炭酸イオン及び／又は炭酸イオンを塩基性アミノ酸の主なカウンタイオンとして利用して塩基性アミノ酸を発酵生産する方法を利用してもよい（特開2002-65287、US2002-0025564A、EP1813677A）。これらの方法によれば、塩基性アミノ酸のカウンタイオンとして従来利用されていた硫酸イオン及び／又は塩化物イオンの使用量を削減しつつ、塩基性アミノ酸を製造することができる。
　目的物質が生成したことは、化合物の検出または同定に用いられる公知の手法により確認することができる。そのような手法としては、例えば、ＨＰＬＣ、ＬＣ／ＭＳ、ＧＣ／ＭＳ、ＮＭＲが挙げられる。これらの手法は適宜組み合わせて用いることができる。
　生成した目的物質の回収は、化合物の分離精製に用いられる公知の手法により行うことができる。そのような手法としては、例えば、イオン交換樹脂法、膜処理法、沈殿法、および晶析法が挙げられる。これらの手法は適宜組み合わせて用いることができる。なお、菌体内に目的物質が蓄積する場合には、例えば、菌体を超音波などにより破砕し、遠心分離によって菌体を除去して得られる上清から、イオン交換樹脂法などによって目的物質を回収することができる。回収される目的物質は、フリー体、その塩、またはそれらの混合物であってよい。塩としては、例えば、硫酸塩、塩酸塩、炭酸塩、アンモニウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩が挙げられる。例えば、Ｌ－リジンは、フリー体のＬ－リジン、Ｌ－リジン硫酸塩、Ｌ－リジン塩酸塩、Ｌ－リジン炭酸塩、またはそれらの混合物であってもよい。また、例えば、Ｌ－グルタミン酸は、フリー体のＬ－グルタミン酸、Ｌ―グルタミン酸ナトリウム（monosodium L-glutamate；ＭＳＧ）、Ｌ－グルタミン酸アンモニウム塩（monoammonium L-glutamate）、またはそれらの混合物であってもよい。例えば、Ｌ－グルタミン酸の場合、発酵液中のＬ－グルタミン酸アンモニウムを酸を加えて晶析させ、結晶に等モルの水酸化ナトリウムを添加することでＬ－グルタミン酸ナトリウム（ＭＳＧ）が得られる。なお、晶析前後に活性炭を加えて脱色してもよい（グルタミン酸ナトリウムの工業晶析　日本海水学会誌　56巻　5号　川喜田哲哉参照）。また、例えば、イノシン酸の塩としては、具体的には、イノシン酸ナトリウム（5'-IMP disodium salt）が挙げられる。また、例えば、グアニル酸の塩としては、具体的には、グアニル酸ナトリウム（5'-GMP disodium salt）が挙げられる。
　また、目的物質が培地中に析出する場合は、遠心分離又は濾過等により回収することができる。また、培地中に析出した目的物質は、培地中に溶解している目的物質を晶析した後に、併せて単離してもよい。
　尚、回収される目的物質は、目的物質以外に、例えば、細菌菌体、培地成分、水分、及び細菌の代謝副産物等の成分を含んでいてもよい。回収された目的物質の純度は、例えば、30％（w/w）以上、50％（w/w）以上、70％（w/w）以上、80％（w/w）以上、90％（w/w）以上、または95％（w/w）以上であってよい。
　Ｌ－アミノ酸がＬ－グルタミン酸である場合、例えば、Ｌ－グルタミン酸ナトリウム結晶をうま味調味料として用いることができる。Ｌ－グルタミン酸ナトリウム結晶は、同様にうま味を有するグアニル酸ナトリウムやイノシン酸ナトリウム等の核酸と混合して調味料として用いてもよい。
＜２－２＞プリンヌクレオチドの製造法
　本発明の細菌によりプリンヌクレオシドが生産される場合、該プリンヌクレオシドを利用して、プリンヌクレオチドを製造することができる。すなわち、本発明は、プリンヌクレオシド生産能を有する本発明の細菌を培地で培養し培地にプリンヌクレオシドを蓄積すること、該プリンヌクレオシドをリン酸化しプリンヌクレオチドを生成すること、および該プリンヌクレオチドを回収すること、を含むプリンヌクレオチドの製造法を提供する。
　この方法においては、使用するプリンヌクレオシドに対応するプリンヌクレオチドが生成する。すなわち、例えば、イノシンからはイノシン酸を、グアノシンからはグアニル酸を、キサントシンからはキサンチル酸を、アデノシンからはアデニル酸を、それぞれ製造できる。本発明においては、１種のプリンヌクレオチドが製造されてもよく、２種またはそれ以上のプリンヌクレオチドが製造されてもよい。
　プリンヌクレオシドは、培地に含まれたままリン酸化に供してもよく、培地から回収してからリン酸化に供してもよい。また、プリンヌクレオシドは、適宜前処理を行ってからリン酸化に供してもよい。前処理としては、例えば、精製、希釈、濃縮、結晶化、乾燥、破砕、溶解等が挙げられる。これらの前処理は、適宜組み合わせて行ってもよい。例えば、プリンヌクレオシドを含有する培養液をそのまま、あるいは所望の程度に精製して、リン酸化に供してよい。
　プリンヌクレオシドをリン酸化する手法は特に制限されない。リン酸化は、例えば、公知の手法により行うことができる。
　リン酸化は、例えば、化学的に行うことができる。化学的リン酸化は、塩化ホスホリル（POCl3）等のリン酸化剤を使用して行うことができる（Yoshikawa et. al., Studies of phosphorylation, III, Selective phosphorylation of unprotected nucleosides, Bull. Chem. Soc. Jpn., 1969, 42: 3505-3508）。
　リン酸化は、例えば、微生物または酵素を利用して行うことができる。すなわち、プリンヌクレオシドおよびリン酸供与体に、ヌクレオシド－５'－リン酸エステルを生成する能力を有する微生物を作用させることにより、プリンヌクレオチドを生成することができる（特開平07-231793）。また、プリンヌクレオシドおよびリン酸供与体に、リン酸化酵素を作用させることにより、プリンヌクレオチドを生成することができる。
　ヌクレオシド－５'－リン酸エステルを生成する能力を有する微生物として、具体的には、例えば、以下のようなものが挙げられる（特開平07-231793）。
エシェリヒア・ブラッタエ（Escherichia blattae）JCM 1650
セラチア・フィカリア（Serratia ficaria）ATCC 33105
クレブシエラ・プランティコーラ（Klebsiella planticola）IFO 14939（ATCC 33531）
クレブシエラ・ニューモニエ（Klebsiella pneumoniae）IFO 3318（ATCC 8724）
クレブシエラ・テリゲナ（Klebsiella terrigena）IFO 14941（ATCC 33257）
モルガネラ・モルガニ（Morganella morganii）IFO 3168
エンテロバクター・アエロゲネス（Enterobacter aerogenes）IFO 12010
エンテロバクター・アエロゲネス（Enterobacter aerogenes）IFO 13534（ATCC 13048）
クロモバクテリウム・フラビアタイル（Chromobacterium fluviatile）IAM 13652
クロモバクテリウム・ビオラセウム（Chromobacterium violaceum）IFO 12614
セデシア・ラパゲイ（Cedecea lapagei）JCM 1684
セデシア・ダビシエ（Cedecea davisiae）JCM 1685
セデシア・ネテリ（Cedecea neteri）JCM 5909
　リン酸化酵素としては、例えば、ホスファターゼ、ヌクレオシドキナーゼ、ヌクレオシドホスホトランスフェラーゼが挙げられる。リン酸化酵素は、精製されたものであってもよく、そうでなくてもよい。例えば、リン酸化酵素を生産する微生物の培養物、該培養物から分離した培養上清、該培養物から分離した菌体、該微生物の菌体処理物、それらの部分精製物、等のリン酸化酵素を含有する画分をリン酸化酵素として利用してもよい。
　ヌクレオシドキナーゼとしては、例えば、イノシングアノシンキナーゼが挙げられる。イノシングアノシンキナーゼを利用する方法として、具体的には、例えば、エシェリヒア・コリのイノシングアノシンキナーゼをコードする遺伝子を導入したエシェリヒア属細菌を用いるプリンヌクレオチドの製造法（WO91/08286）や、エキシグオバクテリウム・アセチリカムのイノシングアノシンキナーゼをコードする遺伝子を導入したコリネバクテリウム・アンモニアゲネスを用いたプリンヌクレオチドの製造法（WO96/30501）が挙げられる。
　ホスファターゼとしては、例えば、酸性ホスファターゼが挙げられる。酸性ホスファターゼとしては、例えば、特開2002-000289に開示されているものが挙げられる。また、好ましい酸性ホスファターゼとしては、例えば、ヌクレオシドに対する親和性が上昇した変異型酸性ホスファターゼ（特開平10-201481）、ヌクレオチダーゼ活性が低下した変異型酸性ホスファターゼ（WO96/37603）、リン酸エステル加水分解活性が低下した変異型酸性ホスファターゼ（特開2001-245676）が挙げられる。
　リン酸供与体としては、例えば、ポリリン酸、フェニルリン酸、アセチルリン酸、カルバミルリン酸、ＡＴＰ、ｄＡＴＰ（デオキシＡＴＰ）が挙げられる。ポリリン酸としては、例えば、ピロリン酸、トリポリリン酸、トリメタリン酸、テトラメタリン酸、ヘキサメタリン酸が挙げられる。リン酸供与体は、いずれもフリー体もしくはその塩、またはそれらの混合物であってよい。塩としては、例えば、ナトリウム塩やカリウム塩が挙げられる。リン酸供与体は、用いる微生物やリン酸化酵素の種類等に応じて適宜選択することができる。また、ＡＴＰやｄＡＴＰをリン酸供与体として用いる場合、それらの再生系を併用することもできる（WO91/08286、WO96/30501）。
　プリンヌクレオチドが生成したことは、化合物の検出または同定に用いられる公知の手法により確認することができる。そのような手法としては、例えば、ＨＰＬＣ、ＬＣ／ＭＳ、ＧＣ／ＭＳ、ＮＭＲが挙げられる。これらの手法は適宜組み合わせて用いることができる。
　生成したプリンヌクレオチドの回収は、化合物の分離精製に用いられる公知の手法により行うことができる。そのような手法としては、例えば、イオン交換樹脂法、膜処理法、沈殿法、および晶析法が挙げられる。これらの手法は適宜組み合わせて用いることができる。回収されるプリンヌクレオチドは、フリー体、その塩、またはそれらの混合物であってよい。尚、回収されるプリンヌクレオチドは、プリンヌクレオチド以外に、リン酸化酵素、リン酸供与体、細菌菌体、培地成分、水分、及び細菌の代謝副産物等の成分を含んでいてもよい。プリンヌクレオチドは、所望の程度に精製されていてよい。プリンヌクレオチドの純度は、例えば、30％（w/w）以上、50％（w/w）以上、70％（w/w）以上、80％（w/w）以上、90％（w/w）以上、または95％（w/w）以上であってよい。
　以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
（１）使用培地
　本実施例で使用した培地の組成と調製法を以下に示す。
[LB培地]
　10 g/Lポリペプトン、5 g/L酵母エキス、5 g/L NaCl。NaOHを用いてpH7.0に調整する。寒天培地には15 g/L寒天を加える。
[CM-Dex培地]
　10 g/Lポリペプトン、10 g/L酵母エキス、5 g/Lグルコース、1 g/L KH2PO4、3 g/L尿素、0.4 g/L MgSO4・7H2O、0.01 g/L FeSO4・7H2O、0.01 g/L MnSO4・5H2O、1.2 g/L（T-N）豆ろ液（大豆加水分解物）。KOHを用いてpH 7.5に調整する。寒天培地には15 g/L寒天を加える。
[S10寒天培地]
　100 g/Lスクロース、10 g/Lポリペプトン、10 g/L酵母エキス、1 g/L KH2PO4、3 g/L尿素、0.4 g/L MgSO4・7H2O、0.01 g/L FeSO4・7H2O、0.01 g/L MnSO4・5H2O、1.2 g/L（T-N）豆ろ液、10μg/Lビオチン。KOHを用いてpH 7.5に調整する。寒天培地には15 g/L寒天を加える。
[キシロース最少培地]
　2.5 g/L、5.0 g/L、あるいは10 g/Lキシロース、2.5 g/L (NH4)2SO4、0.5 g/L KH2PO4、0.25 g/L MgSO4・7H2O、2 g/L尿素、10 mg/L MnSO4・4H2O、50μg/Lビオチン、100μg/L ビタミンB1-HCl、15 mg/Lプロトカテク酸、0.02 mg/L CuSO4、10 mg/L CaCl2、40 g/L MOPS。KOHを用いてpH 7.0に調整する。
[シード培地]
　60 g/Lグルコース、1.45 g/L K3PO4、1.45 g/L KOH、0.9 g/L MgSO4・7H2O、0.01 g/L FeSO4・7H2O、2 g/Lコハク酸ナトリウム・6H2O、8.55 mg/Lパラアミノ安息香酸、8.55 mg/Lアスコルビン酸、200μg/LビタミンB1-HCl、60μg/Lビオチン、1.54 g/L（T-N）豆ろ液、0.28 g/L DL-メチオニン、5 mL/L Fermol、25 mg/Lカナマイシン。アンモニアガスでpH 7.2に調整する。
[グルコース-メイン培地]
　90 g/Lグルコース、3.46 g/L KH2PO4、1 g/L MgSO4・7H2O、0.01 g/L FeSO4・7H2O、0.01 g/L MnSO4・5H2O、23 mg/LビタミンB1-HCl、0.35 g/L（T-N）豆ろ液、15 mL/L Fermol、25 mg/Lカナマイシン。アンモニアガスでpH7.2に調整する。
[キシロース-メイン培地]
　グルコース-メイン培地の90 g/Lグルコースを100 g/Lキシロースに置き換えたもの。
[グルコース／キシロース-メイン培地]
　グルコース-メイン培地の90 g/Lグルコースを45 g/Lグルコースと45 g/Lキシロースに置き換えたもの。
（２）キシロース資化能が付与されたC. glutamicumの構築
　E. coli由来のキシロースイソメラーゼおよびキシルロキナーゼをコードするxylAB遺伝子が搭載されたプラスミドpVK9Peftu_xylABを用いてC. glutamicum ATCC13869株を形質転換することにより、キシロース資化能が付与されたC. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株を構築した。手順を以下に示す。
（２－１）pVK9Peftu_xylABの構築
　E. coli由来xylAB遺伝子の発現プラスミドpVK9Peftu_xylABを以下の手順で構築した。pVK9Peftu_xylABは、C. glutamicum由来エロンゲーションファクターTu（EF-Tu）遺伝子tufのプロモーター配列（W02008114721、以下、「Peftu」と記載する。）の下流にE. coli由来xylAB遺伝子を連結した配列を含む。
　E. coli MG1655株の染色体DNAを鋳型として、プライマーxylA_SP(2)_4691-80-12（配列番号１）とxylAB_ASP_4691-80-13（配列番号２）を用いて、PCRによりxylAB遺伝子を含むDNA断片（xylAB断片）を得た。また、C. glutamicum ATCC13869株の染色体DNAを鋳型として、プライマーEFTU_SP_4691-80-1（配列番号３）とEFTU_ASP_4691-80-2（配列番号４）を用いて、PCRによりPeftuを含むDNA断片（Peftu断片）を取得した。PCR反応は、PrimeSTAR HS DNA Polymerase（タカラバイオ株式会社）を用い、同酵素に付属のプロトコルに従って行った。
　上記のようにして得られたxylAB断片とPeftu断片とを、Xba I処理したpVK9（特開2007-97573、米国特許出願公開20050196846号）と混合し、Clontech In-Fusion HD Cloning Kit（タカラバイオ株式会社）を用い、同キットに付属のプロトコルに従ってin-fusion反応を行った後、この反応液でE. coli JM109を形質転換した。形質転換体は、LB寒天培地（40 mg/Lカナマイシンを含む）で37℃、一晩培養して選抜した。得られた形質転換体より、目的のプラスミドpVK9Peftu_xylABを取得した。クローニングされたEF-Tuプロモーター（Peftu）およびxylAB遺伝子の塩基配列を、それぞれ、配列番号９および１０に示す。
（２－２）C. glutamicumの形質転換
　電気パルス法（特開平2-207791）により、pVK9Peftu_xylABでC. glutamicum ATCC13869株を形質転換した。形質転換体は、CM-Dex寒天培地（25 mg/Lカナマイシンを含む）で31.5℃、一晩培養して選抜し、キシロース資化能が付与されたC. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株を得た。
（３）キシロース資化能が付与されたC. glutamicumのキシロース最少培地での生育
　上記のようにしてキシロース資化能が付与されたC. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株を、キシロースを唯一炭素源とする最少培地（キシロース最少培地）で培養した。
　CM-Dex寒天培地（25 mg/Lカナマイシンを含む）にC. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株の菌体を塗り広げ、31.5°Cにて一晩培養した。培養後の寒天培地から約1 cm四方の菌体をかきとり、1 mLの0.25%（w/v）キシロース最少培地に懸濁後、波長660 nmに対する吸光度（OD660）が0.01となるように、0.25%（w/v）、0.5%（w/v）、あるいは1.0%（w/v）キシロース最少培地（いずれも25 mg/Lカナマイシンを含む）が5 mLはりこまれた培養管にそれぞれ植菌した。小型振盪培養装置 TVS062CA（アドバンテック東洋株式会社）を用い、培養温度31.5°C、振盪速度70 rpmで培養し、各時間のOD660を測定した。
　各培地での生育の様子を図１に示す。培養開始後約40時間目までは、キシロース濃度の低い培地ほど、菌体の増殖速度が低い傾向が観察された。しかしながら、キシロース濃度の最も低い0.25%（w/v）キシロース最少培地では、培養開始後約40時間目まではほとんど菌体の増殖が観察されなかったものの、その後急速に増殖した。
（４）キシロース最少培地での増殖速度が向上した変異株の取得
　上記（３）において0.25%（w/v）キシロース最少培地で60時間培養して得られた培養液（図１）を、CM-Dex寒天培地（25 mg/Lカナマイシンを含む）上に塗り広げ、31.5°Cにて一晩培養してコロニーを形成させた。得られたコロニーをかきとり、それぞれCM-Dex寒天培地（25 mg/Lカナマイシンを含む）に再度植え継ぎ、単一のクローンを取得した。
　上記のようにして得られたいくつかのクローンを、上記（３）と同様にキシロース最少培地で培養した結果、キシロース濃度が低い培地においても増殖速度が大きく低下しない変異株（XM株）が取得された（図２）。さらに、このXM株は、1.0%（w/v）キシロース最少培地における比増殖速度も、親株（C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株）と比較して飛躍的に向上していた（図４（後述））。
（５）キシロース資化能向上変異株の変異点解析
　上記（４）と同様の試験より、キシロース最少培地での増殖速度が向上した変異株を、XM株を含めて6株取得した。得られた6株の変異株について、MiSeq2000（イルミナ株式会社）を用いて、染色体DNAの塩基配列を親株のものと比較した。その結果、いずれの変異株においても、染色体上のNCgl2954遺伝子の内部に翻訳後アミノ酸変異を伴う変異が検出された（表１）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
（６）C. glutamicumのNCgl2954遺伝子欠損株の構築
（６－１）NCgl2954遺伝子欠損用プラスミドpBS4SΔNCgl2954の構築
　NCgl2954遺伝子欠損用プラスミドpBS4SΔNCgl2954は以下のようにして調製した。
　まず、C. glutamicum ATCC13869株の染色体DNAを鋳型に、プライマーdelta_2954_F1（配列番号５）とdelta_2954_MR（配列番号６）を用いてPCRを行い、NCgl2954遺伝子上流の領域を含むDNA断片を増幅した。また、同じくC. glutamicum ATCC13869株の染色体DNAを鋳型に、プライマーdelta_2954_MF（配列番号７）とdelta_2954_R1（配列番号８）を用いてPCRを行い、NCgl2954遺伝子下流の領域を含むDNA断片を増幅した。PCR反応は、PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを用い、同酵素に付属のプロトコルに従って行った。
　上記で得られた二つのDNA断片を、Xba Iで処理したプラスミドpBS4S（特開2007-97573, 米国特許出願公開20050196846号）と混合し、Clontech In-fusion HD Cloning Kitを用い、同キットに付属のプロトコルに従ってin-fusion反応を行った後、この反応液でE. coli DH5αを形質転換した。形質転換体は、LB寒天培地（40 mg/Lカナマイシンを含む）で37℃、一晩培養して選抜した。得られた形質転換体から、pBS4SにNCgl2954遺伝子の上流と下流の配列が挿入されたプラスミドpBS4SΔNCgl2954を取得した。
（６－２）NCgl2954遺伝子欠損株の取得
　電気パルス法により、pBS4SΔNCgl2954でC. glutamicum ATCC13869株を形質転換し、CM-Dex寒天培地（25 mg/Lカナマイシンを含む）で31.5°C、二晩培養することで、pBS4SΔNCgl2954が染色体上に組み込まれた一点組み換え体を取得した。得られた一点組み換え体をS10寒天培地に植え継ぎ、NCgl2954遺伝子領域が欠損された二点組み換え体C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954株を取得した。
（７）NCgl2954遺伝子欠損株のキシロース最少培地での生育
　上記（２－２）と同様にして、C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954株をpVK9Peftu_xylABで形質転換し、キシロース資化能が付与されたNCgl2954遺伝子欠損株（C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株）を取得した。この株について、上記（３）と同様に、0.25%（w/v）、0.5%（w/v）、および1.0%（w/v）キシロース最少培地での生育を検証した。
　NCgl2954遺伝子欠損株は、低濃度のキシロース最少培地においても、野生株（C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株）のような大幅な増殖速度の低下は認められず、XM株と同等の比増殖速度を示した（図３、図４）。以上より、XM株におけるキシロース最少培地での増殖速度向上の要因は、NCgl2954遺伝子の不活化あるいは弱化であることが強く示唆された。本検証により、NCgl2954遺伝子を欠失させると、キシロースの資化性が向上することが明らかとなった。
（８）NCgl2954遺伝子の欠損がキシロースを炭素源とするグルタミン酸生産に与える影響
　NCgl2954遺伝子欠損株（C. glutamicum ATCC13869ΔNCgl2954 / pVK9Peftu_xylAB株）と野生株（C. glutamicum ATCC13869 / pVK9Peftu_xylAB株）について、キシロースを含有する培地を用いてビオチン制限によるグルタミン酸発酵試験を行い、NCgl2954遺伝子の欠損がキシロースを炭素源とするグルタミン酸生産に与える影響を検証した。
（８－１）培養条件および分析条件
　グルタミン酸発酵試験は、ジャーファーメンターを用いて行った。各菌株をCM-Dex寒天培地（25 mg/Lカナマイシンを含む）で31.5°C、一晩培養した。培養後の寒天培地から、1 cm四方の菌体をかきとり、250 mLのシード培地をはりこんだジャーファーメンターに植菌した。培養温度31.5°C、pH 7.2（アンモニアガスを添加して調整）、通気量250 mL/min、撹拌数700 rpmにて培養し、培地中のグルコースが完全に消費されるまで培養した。このようにして得られたシード培養液を、最終液量が250 mLとなるように各メイン培地（グルコース、キシロース、およびグルコース／キシロース）にそれぞれ接種［10%（v/v）］し、培養温度31.5°C、pH 7.2（アンモニアガスを添加して調整）、通気量250 mL/min、撹拌数700 rpmにて培養した。
　各時間にて培養液をサンプリングし、培養液のOD620、培養上清のグルコース濃度、キシロース濃度、およびグルタミン酸濃度を測定した。培養液のOD620はU-2900（株式会社日立ハイテクノロジーズ）を用いて測定した。培養上清中のグルタミン酸濃度およびグルコース濃度はバイオテックアナライザAS-310（サクラエスアイ株式会社）を用いて測定した。培養上清中のキシロース濃度はHPLCシステム（ポンプL-7100およびオートサンプラーL-7200（株式会社日立ハイテクノロジーズ）；カラムオーブンCO 705（ジーエルサイエンス株式会社））を用いて測定した。HPLCの分析条件は以下の通り：カラム SHODEX（SUGAR-GおよびSUGAR SH1011（昭和電工株式会社））；カラム温度 50°C；溶離液 H2O；流速 1.0 mL/min；検出 RI Detector（株式会社日立ハイテクノロジーズ）。
（８－２）グルコース培地でのグルタミン酸生産の結果
　グルコース培地では、野生株、NCgl2954遺伝子欠損株共に、11時間の培養で培地中のグルコースを完全に消費し、両株間でグルコース消費速度およびグルタミン酸生産性に違いは認められなかった（図５）。
（８－３）キシロース培地でのグルタミン酸生産の結果
　キシロース培地では、野生株は11時間培養後も培地中に40 g/Lのキシロースを残し、その時のグルタミン酸の蓄積量は6.4 g/Lであった（図６）。すなわち、野生株は、グルコースに比べてキシロースの資化速度が著しく遅いことが確認された。一方、NCgl2954遺伝子欠損株は、11時間の培養で培地中のキシロースをほぼ完全に消費し、23.6 g/Lのグルタミン酸を蓄積した（図６）。これより、NCgl2954遺伝子の欠失によって、キシロースの資化速度が向上し、グルタミン酸の生産性も向上することが示された。
（８－４）グルコース／キシロース培地でのグルタミン酸生産の結果
　グルコース／キシロース培地では、野生株は11時間培養後も培地中に11 g/Lのキシロースを残し、その時のグルタミン酸蓄積は16.5 g/Lであった（図７）。これに対し、NCgl2954遺伝子欠損株は、11時間の培養でグルコースおよびキシロースを完全に消費し、24.1 g/Lのグルタミン酸を蓄積した（図７）。このように、NCgl2954遺伝子欠損株では、特にグルコース存在下においても野生株と比較してキシロース消費速度の向上が認められたことから、NCgl2954遺伝子の欠失がグルコースおよびキシロースの同時資化にも効果があることが示された。
（９）NXA経路が導入されたC. glutamicumの構築
　NXA経路の遺伝子が導入されたC. glutamicumは、プラスミドpVK9Peftu_ccrNXA（WO2013069634 A1）を用いて形質転換することにより、取得することができる。pVK9Peftu_ccrNXAは、C. glutamicum由来EF-Tuプロモーター（Peftu）の下流にC. crescentus CB15（ATCC19089）由来のNXA経路をコードするxylXABCD遺伝子を連結した配列を含む。C. glutamicum ATCC13869およびATCC13869ΔNCgl2954の染色体上にE. coli由来のキシロン酸デヒドラターゼをコードするyagF遺伝子を導入し、さらにpVK9Peftu_ccrNXAを用いて形質転換することにより、NXA経路を介してキシロースからＬ－グルタミン酸を生産できる株を構築した。手順を以下に示す。
（９－１）pBS4SΔxylB_yagFの構築
　C. glutamicum ATCC13869株の染色体上のキシルロキナーゼをコードするxylB遺伝子領域に、E. coli由来のキシロン酸デヒドラターゼをコードするyagF遺伝子を導入するため、プラスミドpBS4SΔxylB_yagFを以下のようにして構築した。
　まず、C. glutamicum ATCC13869株の染色体DNAを鋳型にプライマーxylB_F1（配列番号２７）とxylB_MR（配列番号２８）を用いてPCRを行い、xylB遺伝子上流の領域を含むDNA断片を増幅した。また、同じくC. glutamicum ATCC13869株の染色体DNAを鋳型にプライマーxylB_MF（配列番号２９）とxylB_R1（配列番号３０）を用いてPCRを行い、xylB遺伝子下流の領域を含むDNA断片を増幅した。PCR反応はPrimeSTAR HS DNA Polymeraseを用い、同酵素に付属のプロトコルに従って行った。
　上記で得られた二つのDNA断片を、Xba Iで処理したプラスミドpBS4S（特開2007-97573, 米国特許出願公開20050196846号）と混合し、Clontech In-fusion HD Cloning Kitを用い、同キットに付属のプロトコルに従ってin-fusion反応を行った後、この反応液でE. coli DH5α株を形質転換した。形質転換体は、LB（40 mg/Lカナマイシンを含む）寒天培地で37℃、一晩培養して選抜した。得られた形質転換体からプラスミドを抽出し、pBS4SにxylB遺伝子上流と下流の配列が挿入されたプラスミドpBS4SΔxylBを取得した。pBS4SΔxylBでは、xylB遺伝子上流の配列と下流の配列の間にXba I認識配列が挿入されている。
　続いて、E. coli MG1655株の染色体DNAを鋳型にプライマーPcspB_yagF_fw（配列番号３１）とyagF_xylB_rv（配列番号３２）を用いてPCRを行い、yagF遺伝子を含むDNA断片を増幅した。また、C. glutamicum ATCC13869株の染色体DNAを鋳型にプライマーxylB_PcspB_fw（配列番号３３）とPcspB_rv（配列番号３４）を用いてPCRを行い、cspB遺伝子のプロモーター領域（以下、「PcspB」と記載する。）を含むDNA断片を増幅した。PCR反応は、PrimeSTAR HS DNA Polymeraseを用い、同酵素に付属のプロトコルに従って行った。
　上記で得られた二つのDNA断片を、Xba Iで処理したプラスミドpBS4SΔxylBと混合し、Clontech In-fusion HD Cloning Kitを用い、同キットに付属のプロトコルに従ってin-fusion反応を行った後、この反応液でE. coli DH5αを形質転換した。形質転換体は、LB（40 mg/Lカナマイシンを含む）寒天培地で37℃、一晩培養して選抜した。得られた形質転換体からプラスミドを抽出し、PcspBの下流にyagF遺伝子が連結された配列がxylB遺伝子上流の配列と下流の配列の間に挿入されたプラスミドpBS4SΔxylB_yagFを取得した。クローニングされたcspBプロモーター（PcspB）およびyagF遺伝子の塩基配列を、それぞれ、配列番号４７および１９に示す。
（９－２）C. glutamicumの形質転換
　電気パルス法により、pBS4SΔxylB_yagFでC. glutamicum ATCC13869株を形質転換し、CM-Dex（25 mg/Lカナマイシンを含む）寒天培地上で31.5°C、二晩培養することで、染色体上にpBS4SΔxylB_yagFが組み込まれた一点組み換え体を取得した。得られた一点組み換え体をS10寒天培地に植え継ぎ、S10寒天培地上で生育し且つカナマイシン感受性を示した株の中から、目的通りyagF遺伝子が導入された株をPCRにより選抜した。このようにして取得した株をATCC13869+D株とした。同株では、染色体上のxylB遺伝子領域がyagF遺伝子で置換されている。
　続いて、pVK9Peftu_ccrNXAでATCC13869+D株を形質転換し、CM-Dex（25 mg/Lカナマイシンを含む）寒天培地で選抜することにより、NXA経路が導入されたATCC13869+D / pVK9Peftu_ccrNXA株を取得した。
　ATCC13869ΔNCgl2954株についても上と同様の操作を行い、染色体上にyagF遺伝子が導入されたATCC13869ΔNCgl2954+D株を取得後、本株をpVK9Peftu_ccrNXAで形質転換することにより、NXA経路が導入されたATCC13869ΔNCgl2954+D / pVK9Peftu_ccrNXA株を取得した。
（１０）NCgl2954遺伝子欠損がNXA経路を介したグルタミン酸生産に与える影響
　NXA経路を介したキシロースからのグルタミン酸生産に対するNCgl2954遺伝子欠損効果を確認するため、ビオチン制限によるグルタミン酸発酵試験を行った。培養条件および分析条件は（８－１）に記載の通りである。
　キシロース培地で培養した結果、NCgl2954遺伝子欠損株は、NCgl2954遺伝子を有する株と比較し、キシロース消費速度が向上し、グルタミン酸の生産速度も向上した（図８）。これより、キシロースイソメラーゼおよびキシルロキナーゼの経路を介した場合だけでなく、NXA経路を介した場合においても、NCgl2954遺伝子を欠損させることにより、キシロースからのグルタミン酸生産性が向上することが示された。
　本発明によれば、コリネ型細菌のキシロース資化能を向上させることができ、キシロースを含む原料から、Ｌ－アミノ酸や核酸等の目的物質を効率よく製造することができる。
＜配列表の説明＞
配列番号１：プライマーxylA_SP(2)_4691-80-12
配列番号２：プライマーxylAB_ASP_4691-80-13
配列番号３：プライマーEFTU_SP_4691-80-1
配列番号４：プライマーEFTU_ASP_4691-80-2
配列番号５：プライマーdelta_2954_F1
配列番号６：プライマーdelta_2954_MR
配列番号７：プライマーdelta_2954_MF
配列番号８：プライマーdelta_2954_R1
配列番号９：EF-Tuプロモーター（Peftu）の塩基配列
配列番号１０：E. coli k-12 MG1655株のキシロースオペロン（xylABオペロン）の塩基配列：
配列番号１１：E. coli k-12 MG1655株のXylAタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１２：E. coli k-12 MG1655株のXylBタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１３：C. glutamicum ATCC13869株のNCgl2954遺伝子の塩基配列
配列番号１４：C. glutamicum ATCC13869株のNCgl2954遺伝子がコードするタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１５：Sphingomonas elodeaのxylB遺伝子の塩基配列
配列番号１６：Sphingomonas elodeaのXylBタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１７：Sphingomonas elodeaのxylC遺伝子の塩基配列
配列番号１８：Sphingomonas elodeaのXylCタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１９：Escherichia coli K-12 MG1655株のyagF遺伝子の塩基配列
配列番号２０：Escherichia coli K-12 MG1655株のYagFタンパク質のアミノ酸配列
配列番号２１：Sphingomonas elodeaのxylX遺伝子の塩基配列
配列番号２２：Sphingomonas elodeaのXylXタンパク質のアミノ酸配列
配列番号２３：Bacillus subtilisのycbD遺伝子の塩基配列
配列番号２４：Bacillus subtilisのYcbDタンパク質のアミノ酸配列
配列番号２５：C. glutamicum ATCC13869株のyggB遺伝子の塩基配列
配列番号２６：C. glutamicum ATCC13869株のYggBタンパク質のアミノ酸配列
配列番号２７～３４：プライマー
配列番号３５：C. glutamicum ATCC13869株のxylB遺伝子の塩基配列
配列番号３６：C. glutamicum ATCC13869株のXylBタンパク質のアミノ酸配列
配列番号３７：Caulobacter crescentus CB15株のxylX遺伝子の塩基配列
配列番号３８：Caulobacter crescentus CB15株のXylXタンパク質のアミノ酸配列
配列番号３９：Caulobacter crescentus CB15株のxylA遺伝子の塩基配列
配列番号４０：Caulobacter crescentus CB15株のXylAタンパク質のアミノ酸配列
配列番号４１：Caulobacter crescentus CB15株のxylB遺伝子の塩基配列
配列番号４２：Caulobacter crescentus CB15株のXylBタンパク質のアミノ酸配列
配列番号４３：Caulobacter crescentus CB15株のxylC遺伝子の塩基配列
配列番号４４：Caulobacter crescentus CB15株のXylCタンパク質のアミノ酸配列
配列番号４５：Caulobacter crescentus CB15株のxylD遺伝子の塩基配列
配列番号４６：Caulobacter crescentus CB15株のXylDタンパク質のアミノ酸配列
配列番号４７：cspBプロモーター（PcspB）の塩基配列

Claims (22)

  1. 　目的物質の生産能を有するコリネ型細菌をキシロースを含有する培地で培養し、目的物質を該培地中に生成蓄積すること、および該培地より目的物質を採取すること、を含む目的物質の製造法であって、
    　前記細菌が、染色体上のNCgl2954遺伝子のコード領域および／または発現制御領域に変異が導入されたことにより、キシロース資化性が向上したことを特徴とする、方法。
  2. 　キシロース資化性の向上が、キシロース取り込み能の向上によるものである、請求項１に記載の方法。
  3. 　NCgl2954遺伝子の発現が弱化されることにより、または該遺伝子が破壊されることにより、キシロース資化性が向上した、請求項１または２に記載の方法。
  4. 　前記NCgl2954遺伝子が、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質をコードするＤＮＡである、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法：
    （Ａ）配列番号１４に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号１４に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号１４に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、コリネ型細菌において欠損させた際にキシロース資化性を向上させる性質を有するタンパク質。
  5. 　前記変異が、下記（１）～（７）の変異から選択される１またはそれ以上の変異である、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法：
    （１）配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基がプロリン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
    （２）配列番号１４の３３４位のシステイン残基に相当するアミノ酸残基がシステイン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
    （３）配列番号１４の３７７位のチロシン残基に相当するアミノ酸残基がチロシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
    （４）配列番号１４の３６５位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
    （５）配列番号１４の３６６位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
    （６）配列番号１４の３６７位のアラニン残基に相当するアミノ酸残基がアラニン以外のアミノ酸残基に置換される変異；
    （７）配列番号１４の３６８位以降のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基が欠失する変異。
  6. 　前記（１）～（６）の変異が、それぞれ下記（１ａ）～（６ａ）の変異である、請求項５に記載の方法：
    （１ａ）配列番号１４の４８３位のプロリン残基に相当するアミノ酸残基がロイシン残基に置換される変異；
    （２ａ）配列番号１４の３３４位のシステイン残基に相当するアミノ酸残基がアルギニン残基に置換される変異；
    （３ａ）配列番号１４の３７７位のチロシン残基に相当するアミノ酸残基がアスパラギン残基に置換される変異；
    （４ａ）配列番号１４の３６５位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がセリン残基に置換される変異；
    （５ａ）配列番号１４の３６６位のロイシン残基に相当するアミノ酸残基がアルギニン残基に置換される変異；
    （６ａ）配列番号１４の３６７位のアラニン残基に相当するアミノ酸残基がフェニルアラニン残基に置換される変異。
  7. 　前記細菌が、さらに、キシロースイソメラーゼ及び／又はキシルロキナーゼの活性が増大するように改変されている、請求項１～６のいずれか１項に記載の方法。
  8. 　前記キシロースイソメラーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項７に記載の方法：
    （Ａ）配列番号１１に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号１１に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロースイソメラーゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号１１に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロースイソメラーゼ活性を有するタンパク質。
  9. 　前記キシルロキナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項７または８に記載の方法：
    （Ａ）配列番号１２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号１２に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシルロキナーゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号１２に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシルロキナーゼ活性を有するタンパク質。
  10. 　前記細菌が、さらに、キシロースデヒドロゲナーゼ、キシロノラクトナーゼ、キシロン酸デヒドラターゼ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ、及びα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼからなる群より選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように改変されている、請求項１～９のいずれか１項に記載の方法。
  11. 　前記キシロン酸デヒドラターゼ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ、及びα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼが、それぞれ、エシェリヒア属細菌、スフィンゴモナス属細菌、及びバチルス属細菌に由来するタンパク質である、請求項１０に記載の方法。
  12. 　前記キシロースデヒドロゲナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項１０または１１に記載の方法：
    （Ａ）配列番号１６または４２に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号１６または４２に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号１６または４２に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロースデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
  13. 　前記キシロノラクトナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項１０～１２のいずれか１項に記載の方法：
    （Ａ）配列番号１８または４４に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号１８または４４に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロノラクトナーゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号１８または４４に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロノラクトナーゼ活性を有するタンパク質。
  14. 　前記キシロン酸デヒドラターゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項１０～１３のいずれか１項に記載の方法：
    （Ａ）配列番号２０または４６に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号２０または４６に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつキシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号２０または４６に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、キシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質。
  15. 　前記２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項１０～１４のいずれか１項に記載の方法：
    （Ａ）配列番号２２または３８に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号２２または３８に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつ２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号２２または３８に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、２－ケト－３－デオキシキシロン酸デヒドラターゼ活性を有するタンパク質。
  16. 　前記α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼが、下記（Ａ）、（Ｂ）、又は（Ｃ）に記載のタンパク質である、請求項１０～１５のいずれか１項に記載の方法：
    （Ａ）配列番号２４または４０に示すアミノ酸配列を有するタンパク質；
    （Ｂ）配列番号２４または４０に示すアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、または付加を含むアミノ酸配列を有し、かつα－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質；
    （Ｃ）配列番号２４または４０に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、かつ、α－ケトグルタル酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ活性を有するタンパク質。
  17. 　前記目的物質が、アミノ酸、核酸、およびペプチドからなる群より選択される物質である、請求項１～１６のいずれか１項に記載の方法。
  18. 　前記目的物質が、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－アルギニン、およびＬ―リジンからなる群より選択されるアミノ酸である、請求項１７に記載の方法。
  19. 　前記目的物質が、イノシン、キサントシン、グアノシン、およびアデノシンからなる群より選択されるプリンヌクレオシドである、請求項１７に記載の方法。
  20. 　前記目的物質が、イノシン酸、キサンチル酸、およびグアニル酸からなる群より選択されるプリンヌクレオチドである、請求項１７に記載の方法。
  21. 　前記細菌が、コリネバクテリウム属細菌である、請求項１～２０のいずれか１項に記載の方法。
  22. 　前記細菌が、コリネバクテリウム・グルタミカムである、請求項２１に記載の方法。
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