WO2007125782A1 - プリン系物質生産菌及びプリン系物質の製造法 - Google Patents

プリン系物質生産菌及びプリン系物質の製造法 Download PDF

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Takayuki Asahara
Kiyoshi Matsuno
Yukiko Mori
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    • C12P19/38—Nucleosides
    • C12P19/40—Nucleosides having a condensed ring system containing a six-membered ring having two nitrogen atoms in the same ring, e.g. purine nucleosides

Definitions

  • Purine substance producing bacteria and method for producing purine substance are provided.
  • mutants Conventionly, microorganisms have been subjected to mutagenesis treatment such as UV irradiation or nitrosoguanidine (N-methy ⁇ ⁇ '-nitro-N-nitrosoguanidine) treatment, and appropriate selections have been made. A method of obtaining a target mutant strain using a medium has been performed.
  • mutagenesis treatment such as UV irradiation or nitrosoguanidine (N-methy ⁇ ⁇ '-nitro-N-nitrosoguanidine) treatment
  • the repressor protein in addition to the purine operon gene group, includes a purA gene involved in AMP biosynthesis (see Non-Patent Document 2), and a glyA gene involved in formyltetrahydrofolate biosynthesis ( It is known to regulate the expression of the pbuG gene (see Non-patent Document 4) encoding the transporter of hypoxanthine Z guanine (see Non-patent Document 3).
  • the succin-lou AMP synthase gene (purA) A microorganism that efficiently produces inosine by destroying and imparting adenine requirement, and destroying purine nucleoside phosphorylase gene (deoD) to inhibit degradation of inosine into hypoxanthine, and A method for producing inosine using bismuth has been disclosed (see Patent Document 8).
  • Fructose monobisphosphatase is one of the gluconeogenic enzymes and is an enzyme that catalyzes the reaction of producing fructose 6-phosphate from fructose 1,6 bisphosphate.
  • the relationship between this enzyme and the biosynthetic pathway of purine substances is not well known, and if the enzyme activity is reduced to breed a purine substance-producing bacterium! /, No attempt has been made! / It was.
  • Patent Document 2 Japanese Patent Publication No.54-17033
  • Patent Document 6 Japanese Patent Publication No.57-41915
  • Patent Document 7 Japanese Patent Laid-Open No. 59-42895
  • Patent Document 9 Japanese Patent Publication No. 51--5075
  • Patent Document 10 Japanese Patent Publication No. 58-17592
  • Patent Document 12 JP-A-58-175493
  • Patent Document 14 Japanese Patent Laid-Open No. 60-156388
  • Patent Document 16 Japanese Patent Laid-Open No. 1 174385
  • Patent Document 17 Japanese Patent Laid-Open No. 3-58787
  • Patent Document 18 Japanese Patent Laid-Open No. 3-164185
  • Patent Document 19 JP-A-5-84067
  • Patent Document 22 Pamphlet of International Publication No. 99Z03988
  • Patent Document 23 U.S. Pat.No. 6,284,495
  • Non-Patent Document 3 J. BacterioL, 2001, 183, 6175-6183
  • Non-Patent Document 4 J. BacterioL, 2003, 185, 5200-5209
  • the present invention creates a Bacillus bacterium suitable for producing a purine substance such as purine nucleoside and / or purine nucleotide by a fermentation method, and a method for producing a purine substance using the bacterium It is an issue to provide.
  • purine substance is a purine nucleoside selected from the group consisting of inosine, xanthosine, guanosine and adenosine.
  • the bacterium belonging to the genus Bacillus, wherein the gene encoding the fructose-bisphosphatase is a gene encoding a protein shown in the following (A) or (B).
  • Bacillus bacteria having the ability to produce purine-based substances examples thereof include a method for increasing the intracellular activity of an enzyme involved in purine biosynthesis common to purine nucleosides and purine nucleotides, that is, purine biosynthesis enzyme.
  • the intracellular activity of the enzyme is preferably increased as compared to an unmodified strain of a Bacillus bacterium, for example, a wild-type Bacillus bacterium.
  • Activity increases corresponds to, for example, a case where the number of enzyme molecules per cell increases or a case where the specific activity per enzyme molecule increases.
  • the activity can be increased by increasing the expression level of the enzyme gene.
  • the activity of phosphoribosyl pyrophosphate synthetase is increased means that the activity of phosphoribosyl pyrophosphate synthetase is increased relative to a non-modified strain such as a wild strain or a parent strain.
  • the activity of phosphoribosyl pyrophosphate synthetase can be measured by, for example, the method of Switzer et al. (Methods EnzymoL, 1978, 51, 3-11), the method of Roth et al. (Methods EnzymoL, 1978, 51, 12-17) .
  • the method of deleting a certain region of the purR gene by restriction enzyme digestion and recombination, or the method of inserting another DNA fragment into the purR gene is from the viewpoint of certainty and stability. preferable.
  • RBS ribosome binding site
  • Examples of the marker gene include drug resistance genes such as a spectinomycin resistance gene and a kanamycin resistance gene.
  • the spectinomycin metagene derived from Enterococcus s faecalis was prepared from Escherichia coli ECE101 strain commercially available from Bacillus Dienetic Stock Center (BGSC). It can be obtained by taking it out.
  • the erythromycin metastasis gene of Staphylococcus aureus is prepared from Escherichia coli ECE91 strain commercially available from Bacillus Dienetic Stock Center (BGSC) and taken out as a plasmid strength cassette. Can be obtained.
  • purine nucleoside phosphorylase when producing a purine nucleoside, the activity of an enzyme that degrades purine substances may be reduced in order to enhance the ability to produce purine nucleosides.
  • an enzyme is purine nucleoside phosphorylase.
  • succin-lou AMP synthase examples include the purrA gene.
  • the purA gene includes, for example, those having a base sequence registered in GenBank Accession No. NC — 000964 (coding region is base number 4153460 to 4155749 of the complementary strand) (SEQ ID NO: 11).
  • the purR, deoD, pupG, purA or guaB gene disrupted as described above, or the prs gene whose expression is enhanced may be conservative variants, for example, SEQ ID NOs: 6, 8 respectively. 10, 12, 14, 16 or 4, comprising one or several amino acid substitutions, deletions, insertions, additions or inversions, respectively, and a purine repressor, It may be a DNA encoding a protein having the activity of purine nucleoside phosphorylase, succine-loop AMP synthase, IMP dehydrogenase, or phosphoribosyl pyrophosphate synthetase.
  • the “several” is, for example, 2 to 50, preferably 2 to 30, more preferably 2 to 10.
  • DNA homology can be evaluated by calculation methods such as BLAST search, FASTA search, and CrustalW.
  • the FASTA search method is described by WR Pearson !, ("Rapid and sensitive Sequence Comparison with FAb ⁇ and FASTA", Metho ds in Enzymology, 1990 183: 63-98)
  • the ClustalW method is described by Thompson JD ⁇ Higgins DG and Gibson TJ (“CLUSTAL W: The sensitivity of progressive multiple sequence alignment by sequence weighting, position-specific gap penalty and weight matrix method selection” Improvement (CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and w eight matrix choices) ”, Nucleic Acids Res. 1994, 22: 4673-4680).
  • the target gene In order to incorporate the target gene into the chromosomal DNA of a bacterium belonging to the genus Bacillus, it may be carried out in the same manner as a gene encoding a transtransferase to be described later.
  • fructose 1,6 bisphosphate is converted to fructose 6 phosphate by fructose monobisphosphatase (EC: 3.1.3.11), and glucose 6 phosphate isomerase and glucose are further converted. 6 This means the pathway for biosynthesis of darcos by phosphatase (EC: 3.1.3.9).
  • the enzyme activity of fructose-bisphosphatase can be measured by the following method. For example, it can be measured by a method in which the production of fructose 6-phosphate is measured by converting it into NADPH with phosphodarcoisomerase and glucose 6-phosphate dehydrogenase.
  • fructose-bisphosphatase on the chromosome is obtained by homologous recombination. This can be achieved by replacing a gene that does not function normally with a gene (for example, a disrupted gene in which a marker gene such as drug resistance is inserted into a gene encoding fructose-bisphosphatase).
  • the fructose bisphosphatase of Bacillus subtilis includes a protein that also comprises 671 amino acid force shown in SEQ ID NO: 2, and a gene encoding the protein, preferably SEQ ID NO: 1 (ip gene; Genbank A gene having the base sequence of Accession No. NC_000964 (base numbers 4127053 to 4129065) can be used for modification.
  • the fbp gene is present at about 323 degrees on the Bacillus subtilis chromosome.
  • DNA encoding a protein substantially identical to fructose bisphosphatase as described above is substituted, deleted, inserted, added, amino acid residues at a specific site by, for example, site-directed mutagenesis.
  • it can be obtained by modifying the base sequence encoding these enzymes so as to include an inversion.
  • the modified DNA as described above can also be obtained by a conventionally known mutation treatment.
  • any transformation method reported so far may be used.
  • a method for preparing competent cells from cells at the growth stage and introducing DNA Dubnau, D., and Davidoff-Abelson, R., J. Mol. Biol, 1971, 56, 209-221 or host A method in which cells are converted into protoplasts or spheroplasts that readily incorporate recombinant DNA, and thread-replaced DNA is introduced into DNA recipients (Chang, S. and Cohen, SN, Molec. Gen. Genet., 1979 168, 111-11 5).
  • the medium used in the present invention is a conventional method using a normal nutrient medium containing a carbon source, nitrogen source, inorganic salts, and other organic micronutrients such as amino acids and vitamins as necessary. Can do. Either synthetic or natural media can be used.
  • the carbon source and nitrogen source used in the medium may be any one that can be used by the strain to be cultured.
  • organic micronutrients amino acids, vitamins, fatty acids, nucleic acids, and peptone, casamino acids, yeast extracts, soy proteolysates containing these are used, and nutritional requirements that require amino acids for growth. When using a sex mutant, it is necessary to supplement the required nutrients.
  • Purine nucleotides can also be obtained by phosphorylating purine nucleosides produced using the microorganisms of the present invention (Bulletin of the Chemical Society of Japan 42,3505).
  • a method of obtaining GMP by conjugating XMP aminase activity to a microorganism capable of producing XMP of the present invention IMP is obtained by conjugating inosine kinase.
  • a method can also be employed (Biosd. Biotech. Biochem., 51, 840 (1997), Japanese Patent Laid-Open No. 63-230094).
  • the DNA fragment of the ibp region (ibp :: cat) into which the cat gene obtained in (iv) was inserted was subjected to agarose gel electrophoresis, and the target fragment was extracted from the gel.
  • the purified DNA fragment was used to transform B. subtilis KMBS321 competent cells prepared by the method of Dubnau and Davidoff-Abelson (J. Mol. Biol, 1971, 56, 209-221). Converted to obtain a small plate that grows on LB agar plates containing 2.5 ⁇ g / ml chloramfecol and 20 ⁇ g / ml guanine.
  • SEQ ID NO: 20 Primer for amplification of ibp gene downstream region
  • SEQ ID NO: 22 Cat gene amplification primer

Abstract

プリン系物質生産能を有し、フルクトース－ビスフォスファターゼの酵素活性が低下したバチルス属細菌培地中で培養し、該培地中または菌体内にプリン系物質を生成蓄積させ、同培地中又は菌体内からプリン系物質を回収することにより、プリン系物質を製造する。

Description

明 細 書
プリン系物質生産菌及びプリン系物質の製造法
技術分野
[0001] 本発明は 5'—イノシン酸および 5 '—グァ-ル酸を代表とするプリンヌクレオチド、 並びにこれらの合成原料として重要な物質であるイノシンおよびグアノシン等のプリン ヌクレオシド、などのプリン系物質の製造法、及びそれに用いられるバチルス属細菌 に関する。プリン系物質は、調味料、医薬並びにそれらの原料等として有用である。 背景技術
[0002] 発酵法によるイノシンおよびグアノシンの生産に関しては、アデニン要求株、または それにプリンアナログをはじめとする各種の薬剤に対する耐性を付与したバチルス属 の微生物 (特許文献 1〜8参照）、およびブレビパクテリゥム属の微生物 (特許文献 9、 10又は非特許文献 1参照)等を用いる方法が知られて 、る。
[0003] このような変異株を取得するには、従来、微生物に紫外線照射やニトロソグァニジ ン（N- methy卜 Ν'- nitro- N- nitrosoguanidine)処理などの変異誘起処理を行 、、適当 な選択培地を用いて、 目的とする変異株を取得するという方法が行われてきた。
[0004] 一方で、遺伝子工学技術を用いたプリン系物質生産株の育種もバチルス属の微生 物 (特許文献 11〜20参照）、ブレビパクテリゥム属の微生物 (特許文献 21参照）、お よびェシエリヒア属の微生物（特許文献 22参照）で行われている。具体的には、例え ば、プリンオペロンのリプレッサータンパク質遺伝子 (purR)が破壊されたバチルス属 細菌を用いて、ヒポキサンチン、ゥラシル、グァニン及びアデニン等の核酸系物質を 効率よく製造する方法 (特許文献 23参照）が開示されて ヽる。
[0005] バチルス'ズブチリスでは、前記リプレッサータンパク質は、プリンオペロンの遺伝子 群の他に、 AMP生合成に関与する purA遺伝子 (非特許文献 2参照）、ホルミルテト ラヒドロ葉酸生合成に関与する glyA遺伝子 (非特許文献 3参照）およびヒポキサンチ ン Zグァニンのトランスポーターをコードする pbuG遺伝子 (非特許文献 4参照）など の発現を調節することが知られて ヽる。
[0006] さらに、 purR遺伝子破壊に加えて、サクシ-ルー AMPシンターゼ遺伝子（purA)を 破壊してアデニン要求性を付与すること、およびプリンヌクレオシドホスホリラーゼ遺 伝子（deoD)を破壊して、イノシンのヒポキサンチンへの分解を抑制することによって、 イノシンを効率的に製造する微生物、及びそれを用いたイノシンの製造法が開示さ れている (特許文献 8参照)。
フルクトース一ビスフォスファターゼは、糖新生酵素の一つであり、フルクトース 1, 6 ビスリン酸よりフルクトース 6—リン酸を生成する反応を触媒する酵素である。この酵 素とプリン系物質の生合成経路との関係はあまり知られておらず、同酵素活性を低 下させてプリン系物質生産菌を育種すると!/、う試みはなされて!/、なかった。
特許文献 1:特公昭 38- -23099号公報
特許文献 2:特公昭 54- 17033号公報
特許文献 3:特公昭 55- -2956号公報
特許文献 4:特公昭 55- -45199号公報
特許文献 5:特公昭 57- 14160号公報
特許文献 6:特公昭 57- -41915号公報
特許文献 7:特開昭 59 - -42895号公報
特許文献 8:特開 2004- -242610号公報
特許文献 9:特公昭 51- -5075号公報
特許文献 10 ：特公昭 58 — 17592号公報
特許文献 11 ：特開昭 58 — 158197号公報
特許文献 12 ：特開昭 58 — 175493号公報
特許文献 13 ：特開昭 59 — 28470号公報
特許文献 14 ：特開昭 60 — 156388号公報
特許文献 15 ：特開平 1 27477号公報
特許文献 16 ：特開平 1 174385号公報
特許文献 17 ：特開平 3— 58787号公報
特許文献 18 ：特開平 3— 164185号公報
特許文献 19 ：特開平 5— 84067号公報
特許文献 20 ：特開平 5— 192164号公報 特許文献 21：特開昭 63— 248394号公報
特許文献 22：国際公開第 99Z03988号パンフレット
特許文献 23 :米国特許第 6, 284, 495号
非特許文献 l :Agri Biol.Chem., 1978, 42, 399-405
非特許文献 2 : Pro Natl. Acad. Sci. USA, 1995, 92, 7455-7459
非特許文献 3 : J. BacterioL, 2001, 183, 6175-6183
非特許文献 4 : J. BacterioL, 2003, 185, 5200-5209
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0008] 本発明は、発酵法によってプリンヌクレオシド及び/又はプリンヌクレオチドなどのプ リン系物質を製造するために好適なバチルス属細菌を創製すること、及び同細菌を 用いたプリン系物質の製造法を提供することを課題とする。
課題を解決するための手段
[0009] 本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を行った。その結果、バチルス 属細菌にお ヽて、糖新生経路のフルクトース ビスフォスファターゼの酵素活性を低 下させることによって、プリンヌクレオシドゃプリンヌクレオチドの生産能が向上するこ とを見出し、本発明を完成するに至った。
[0010] すなわち本発明は以下のとおりである。
(1)プリン系物質生産能を有し、フルクトースービスフォスファターゼの酵素活性が低 下するように改変されたバチルス属細菌。
(2)前記プリン系物質がイノシン、キサントシン、グアノシン、アデノシン力もなる群より 選択されるプリンヌクレオシドである前記バチルス属細菌。
(3)前記プリン系物質がイノシン酸、キサンチル酸、グァ-ル酸、アデニル酸力 なる 群より選択されるプリンヌクレオチドである前記バチルス属細菌。
(4)前記フルクトースービスフォスファターゼをコードする遺伝子を破壊することにより 、フルクトース ビスフォスファターゼ活性が低下した前記バチルス属細菌。
(5)前記フルクトース—ビスフォスファターゼをコードする遺伝子が下記 (A)又は（B) に示すタンパク質をコードする遺伝子である前記バチルス属細菌。 (A)配列番号 1に記載のアミノ酸配列を有するタンパク質
(B)配列番号 1に記載のアミノ酸配列において、 1若しくは数個のアミノ酸残基の置 換、欠失、挿入、付加、又は逆位を含むアミノ酸配列を有し、かつ、フルクトースービ スフォスファターゼ活性を有するタンパク質。
(6)さらにホスホリボシルピロリン酸シンセターゼ活性が上昇するように改変されたこと を特徴とする前記バチルス属細菌。
(7)さらに、プリンオペロンの発現量が上昇するように改変されたことを特徴とする前 記バチルス属細菌。
(8)プリンオペロンのリブレッサーをコードする遺伝子である purR遺伝子が破壊され たことにより、プリンオペロンの発現量が上昇したことを特徴とする前記バチルス属細 菌。
(9)さらに、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ活性が低下するように改変されたことを 特徴とする前記バチルス属細菌。
(10)さらに、 IMP脱水素酵素活性が低下するように改変されたことを特徴とする前記 バチルス属細菌。
(11)バチルス属細菌がバチルス ·ズブチリスである前記バチルス属細菌。
(12)前記バチルス属細菌を培地に培養して、同細菌の細胞内又は培地中にプリン 系物質を蓄積せしめ、同細胞又は培地力 プリン系物質を回収することを特徴とする プリン系物質の製造法。
(13)プリン系物質がプリンヌクレオシド又はプリンヌクレオチドである、前記方法。
(14)前記プリン系物質がイノシン、キサントシン、グアノシン、アデノシン力もなる群よ り選択されるプリンヌクレオシドである前記方法。
(15)前記プリン系物質がイノシン酸、キサンチル酸、グァニル酸、アデニル酸からな る群より選択されるプリンヌクレオチドである前記方法。
(16)前記方法によりプリンヌクレオシドを製造し、該プリンヌクレオシドに、ポリ燐酸、 フエニル燐酸、及び力ルバミル燐酸からなる群より選択された燐酸供与体と、ヌクレオ シドー 5'—燐酸エステルを生成する能力を有する微生物又は酸性フォスファターゼ を作用させて、プリンヌクレオチドを生成せしめ、該プリンヌクレオチドを採取すること を特徴とするプリンヌクレオチドの製造法。
発明を実施するための最良の形態
[0011] < 1 >本発明のバチルス属細菌
(I)プリン系物質生産能の付与
本発明において、「活性が低下する」とは、活性が、非改変株、例えば野生型のバ チルス属細菌における活性よりも低いこと、及び、活性が実質的に消失していること を含む。
[0012] 本発明のバチルス属細菌は、プリン系物質生産能を有し、フルクトースービスフォス ファターゼの酵素活性が低下するように改変されたバチルス属細菌である。
「プリン系物質」とはプリン骨格を含む物質をいうが、プリンヌクレオシド、プリンヌクレ ォチドなどが挙げられる。プリンヌクレオシドには、イノシン、キサントシン、グアノシン、 アデノシンなどが含まれ、プリンヌクレオチドには、プリンヌクレオシドの 5，一燐酸エス テル、例えばイノシン酸 (イノシン一 5'—リン酸 以下「IMP」ともいう）、キサンチル酸（ キサントシンー 5，一リン酸 以下「XMP」ともいう）、グァ -ル酸（グアノシン 5，一モノ リン酸、以下「GMP」ともいう）、アデ-ル酸（アデノシン— 5，一モノリン酸以下「AMP」 ともいう）などが含まれる。
[0013] 「プリン系物質生産能」とは、本発明のバチルス属細菌を培地中で培養したときに、 プリン系物質を細胞又はまたは培地から回収できる程度に細胞内または培地中に生 成、分泌、蓄積できる能力をいう。なお、本発明のバチルス属細菌は、上記プリン系 物質のうちの 2種類以上の生産能を有するものであってもよい。
[0014] プリン系物質生産能を有するバチルス属細菌としては、本来的にプリン系物質生産 能を有するものであってもよいが、以下に示すようなバチルス属細菌を、変異法や組 換え DNA法を利用して、プリン系物質生産能を有するように改変することによって得 られるものでもよい。また、後述するようにしてフルクトースービスフォスファタ一ゼの酵 素活性が低下するように改変することによってプリン系物質生産能が付与又は増強さ れたバチルス属細菌であってもよ！/、。
[0015] 尚、本発明において、「酵素活性が低下する」とは、前記フルクトース一ビスフォスフ ァターゼ、又は後述するプリン系物質を分解する酵素、イノシンモノリン酸 (IMP)脱水 素酵素等の酵素活性が、非改変株、例えば野生型のバチルス属細菌における活性 よりも低いこと、及び、活性が実質的に消失していることを含む。また、後述するプリン オペロンリプレッサーの活性にっ 、ても同様である。
[0016] 本発明のバチルス属細菌を得るために用いられるバチルス属細菌としては、バチ ルス'ズブチリス、バチルス 'アミロリケファシエンス、バチルス'プミルス等が挙げられ る。
バチルス'ズブチリスとしては、バチルス'ズブチリス 168 Marburg (ATCC6051) , バチルス'ズブチリス PY79 (Plasmid, 1984, 12, 1-9)等力 バチルス 'アミロリケファシ エンスとしては、バチルス 'アミロリケファシエンス T(ATCC23842)、及びバチルス'ァ ミロリケファシエンス N (ATCC23845)等が挙げられる。また、バチルス ·プミルスとして は、バチルス'プミルス Gottheil No.3218 (ATCC No.21005) (米国特許第 3, 616,206 号)等が挙げられる。これらの菌株は、アメリカン'タイプ'カルチャー 'コレクション (Am erican Type Culture Collection),住所 P.O. Box 1549 Manassas, VA 20108, United States of America)力 ら入手することができる。
[0017] プリン系物質生産能を有するバチルス属細菌は、上記のようなバチルス属細菌に、 例えば、プリンヌクレオシド要求性、又はさらにプリンアナログ等の薬剤に対する耐性 を付与することにより、取得することが出来る（特公昭 38— 23099、特公昭 54— 170 33、特公昭 55— 45199、特公昭 57— 14160、特公昭 57— 41915、特公昭 59— 4 2895参照)。栄養要求性及び薬剤耐性を持つバチルス属細菌は、 N-メチル - N，- ニトロ- N- -トロソグァ-ジン（NTG)、または EMS (ェチルメタンスルフォネート)等の 通常の変異処理に用いられている変異剤による処理によって取得することが出来る。
[0018] プリンヌクレオシドを生産するバチルス属細菌としては、以下のものが挙げられる。
バチルス属に属するイノシン生産株の具体例として、バチルス'ズブチリス KMBS1 6株を使用することができる。同菌株は、プリンオペロンリプレッサーをコードする pur R遺伝子の欠損（purR::spc)、スクシ-ルー AMPシンターゼをコードする purA遺伝 子の欠損（purA::erm)、およびプリンヌクレオシドホスホリラーゼをコードする deoD遺 伝子の欠損（deoD::kan)が導入された、既知のバチルス'ズブチリス trpC2株チ（168 Marburg)の誘導体である（特開 2004— 242610、 US2004166575A1)。また、ノ チルス ·ズブチリス菌株 AJ3772 (FERM P— 2555) (特開昭 62— 014794)等を使 用することちでさる。
[0019] グアノシン生産能を有するバチルス属細菌としては、 IMP脱水素酵素の活性が上 昇したバチルス属細菌（特開平 3— 58787)、プリンアナログ耐性又はデコイ-ン耐 性遺伝子が組み込まれているベクターをアデニン要求性変異株に導入したバチルス 属細菌（特公平 4— 28357)等が挙げられる。
[0020] またプリンヌクレオチドを生産するバチルス属細菌としては、以下のものが挙げられ る。
イノシン酸生産菌としては、バチルス'ズブチリスのフォスファターゼ活性が弱化した イノシン生産株が報告されている（Uchida, K. et al., Agr. Biol. Chem., 1961, 25, 804 -805、 Fujimoto, M. Uchida, K., Agr. Biol. Chem., 1965, 29, 249-259)。グァニル酸 生産菌としては、アデニン要求性を有しさらにデコイニンまたはメチォニンスルフォキ シドに耐性を有し、かつ 5，ーグァ -ル酸（グアノシン 5，一モノリン酸、以下「GMP」 ともいう）生産能を有するバチルス属の変異株が挙げられる。（特公昭 56— 12438号 公報）
[0021] また、キサンチル酸生産菌は、コリネバタテリゥム.アンモニアゲネス（Corynebacteri um ammmoniagenes)を中心とするコリネ型細菌の育種に用いた方法を使用して構築 することができる。例えば、 PRPP amidotransferaseを強化株（特開平 8-168383)、脂 肪族アミノ酸耐性株 (特開平 4-262790)、デヒドロプロリン耐性株 (韓国特許公開公報 2003-56490)を取得することによって、キサンチル酸生産菌を構築することができる。
[0022] また、プリン系物質生産能を有するバチルス属細菌を育種する方法として、以下の 方法が挙げられる。プリンヌクレオシド及びプリンヌクレオチドに共通のプリン生合成 に関与する酵素、すなわちプリン生合成酵素の細胞内での活性を上昇させる方法が 挙げられる。該酵素の細胞内での活性は、バチルス属細菌の非改変株、例えば野生 型のバチルス属細菌よりも上昇させることが好ましい。「活性が上昇する」とは、例え ば、細胞当たりの酵素分子の数が増加した場合や、酵素分子当たりの比活性が上昇 した場合などが該当する。例えば、前記酵素の遺伝子の発現量を上昇させることによ り活性を上昇させることができる。 [0023] 前記プリン生合成に関与する酵素としては、たとえばホスホリボシルピロリン酸アミド トランスフェラーゼ、ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼ（PRPP synthetase [EC:2.7 .6.1])などが挙げられる
[0024] ペントースリン酸系に取り込まれたグルコースなどの糖源が代謝により生成したカタ ボライトの一部は、リブロース一 5—リン酸を経由して、リボース一 5—リン酸となる。生 合成されたリボース 5—リン酸より、プリンヌクレオシド、ヒスチジン、およびトリプトフ アン生合成の不可欠な前駆物質である PRPPが生成される。具体的には、リボース 5—リン酸は、ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼにより PRPPに転換される。した がって、 PRPPシンセターゼの活性が上昇するように改変することにより、バチルス属 細菌にプリン系物質生産能を付与することができる。
[0025] 「ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼの活性が上昇する」とは、ホスホリボシルピロ リン酸シンセターゼの活性が野生株又は親株等の非改変株に対して増カロしているこ とをいう。ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼの活性は例えば、 Switzer等の方法（ Methods EnzymoL, 1978, 51, 3-11)、 Roth等の方法（Methods EnzymoL, 1978, 51, 12-17)により、測定することができる。ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼの活性が 上昇したバチルス属細菌は、例えば、特開 2004— 242610号公報に記載の方法と 同様にして、プラスミドを用いる方法や染色体上に組込む方法などにより、ホスホリボ シルピロリン酸シンセターゼをコードする遺伝子をバチルス属細菌で高発現させるこ とにより作製することができる。本発明に利用出来るホスホリボシルピロリン酸シンセタ ーゼをコードする遺伝子は、配列番号 3に記載のバチルス属細菌由来の prs遺伝子（ Genbank Accession No. X16518)が挙げられるが、他の細菌由来の遺伝子、動植物 由来の遺伝子でもバチルス属でホスホリボシルピロリン酸シンセターゼ活性を有する タンパク質をコードする遺伝子であれば、何れも用いることが出来る。
[0026] 一方、プリンヌクレオシド、ヒスチジン、およびトリプトファン生合成に不可欠な前駆 物質である PRPPが生成されると、その一部は、プリン生合成に関与する酵素群によ りプリンヌクレオチド、プリンヌクレオシドへと変換される。そのような酵素群をコードす る遺伝子としては、バチルス'ズブチリスのプリンオペロン、具体的には purEKB—pu rC (orf ) QLF - purMNH (J)— purDオペロンの遺伝子（Ebbole DJ and Zalkin H, J. Biol. Chem., 1987, 262, 17, 8274-87) (現在では、 purEKBCSQLFMNHDとも呼ばれ る： Bacillus subtilis and Its Closest Relatives, Editor in Chief: A.L. Sonenshein, ASM
Press, Washington D.C., 2002。 Genbank Accession No. NC— 000964)、およびェシェ リヒア.コリの purレギュロンの遺伝子（Escherichia and Salmonella, Second Edition, Ed itor in Chief: F.C. Neidhardt, ASM Press, Washington D.C., 1996)が例示される。
[0027] したがって、これらの遺伝子の発現を増強することにより、プリン系物質生産能を付 与又は増強することもできる。なお、本発明に用いることが出来るプリンオペロン遺伝 子はこれらのものには限定されず、他の微生物や動植物由来の遺伝子も利用するこ とも出来る。
プリンオペロンの発現量を増大させる方法としては、プラスミドを用いる方法や染色 体上に組込む方法などにより、プリンオペロン遺伝子をバチルス属細菌で高発現さ せる方法が挙げられる。
[0028] プリンオペロンの発現量を増大させる第 2の方法として、プリンオペロン固有のプロ モーターをより強力なプロモーターに置換することや、固有のプロモーターの 35、 — 10領域をコンセンサス配列に置換することが挙げられる。
例えば、バチルス'ズブチリス（B. subtilis 168 Marburg株； ATCC6051)では、プリン オペロンの 35配列はコンセンサス配列（TTGACA)であるが、 10配列は TAAG ATであり、コンセンサス配列 TATAATとは異なっている（Ebbole, D. J. and H. Zalik n, J. Biol. Chem., 1987, 262, 8274-8287) 0したがって、 10配列（TAAG AT)を コンセンサス配列あるいはコンセンサス配列に近づけることにより、 TATAAT,また は TATGAT、もしくは TAAAATとなるように改変することで、プリンオペロンの転写 活性を上昇させることができる。なお、プロモーター配列の置換は、下記の遺伝子置 換と同様の方法で行うことが出来る。
[0029] プリンオペロンの発現量を増大させる第 3の方法として、プリンオペロンのリプレッサ 一の発現量を低下させる方法も挙げられる（USP6, 284, 495号）。「プリンオペロン のリブレッサーの発現」とは、プリンオペロン遺伝子の転写、及び転写産物の翻訳の 両方を含む。また、「発現量を低下させる」とは、発現量が、非改変株、例えば野生型 のバチルス属細菌における発現量よりも低いこと、及び、発現が実質的に消失してい ることを含む。
[0030] プリンべオペロンのリプレッサー（プリンリプレッサー）の発現量を低下させるために は、例えば、バチルス属細菌を紫外線照射または NTGもしくは EMS等の通常変異 処理に用いられている変異剤によって処理し、プリンリプレッサーの発現量が低下し た変異株を選択する方法を採用することができる。
[0031] また、プリンリブレッサーの発現量が低下したバチルス属細菌は、変異処理の他に 、例えば、遺伝子組換え法を用いた相同組換え法（Experiments in Molecular Geneti cs, し old Spring Harbor Laboratory press (1972); Matsuyama, b. ana izushima, S., J. BacterioL, 1985, 162, 1196-1202)により、染色体上のプリンリプレッサーをコード する遺伝子（purR;GenBank Accession NC— 000964 (コード領域は塩基番号 54439〜5 5293 ;配列番号 5)を、正常に機能しない遺伝子 (以下、「破壊型遺伝子」ということが ある）で置換すること〖こよって得ることができる。
[0032] 破壊型遺伝子で、宿主染色体上の正常遺伝子を置換するには、例えば以下のよう にすればよい。なお、以下の例では、 purR遺伝子を例として説明する力 他の遺伝 子、例えば後述の purA、 deoD、 guaB又は fbp遺伝子についても、同様にして遺伝 子破壊を行うことができる。
[0033] 染色体上の配列と相同性を有する配列を持ち、バチルス属細菌内で複製できな 、 プラスミド等が菌体内に導入されると、ある頻度で染色体上の相同性を有する配列の 箇所で組換えを起こし、導入されたプラスミド全体が染色体上に組み込まれる。この 後さらに染色体上の相同性を有する配列の箇所で組換えを起こすと、再びプラスミド が染色体上から抜け落ちるが、この時組換えを起こす位置により破壊された遺伝子 の方が染色体上に固定され、元の正常な遺伝子がプラスミドと一緒に染色体上から 抜け落ちることがある。このような菌株を選択することにより、染色体上の正常な purR 遺伝子が破壊型 purR遺伝子に置換された菌株を取得することができる。
[0034] このような相同組換えによる遺伝子破壊技術は既に確立しており、直鎖 DNAを用 いる方法、温度感受性プラスミドを用いる方法等が利用できる。また、薬剤耐性等の マーカー遺伝子が内部に挿入された purR遺伝子を含み、かつ、目的とする微生物 細胞内で複製できな 、プラスミドを用いることによつても、 purR遺伝子の破壊を行うこ とができる。すなわち、前記プラスミドで形質転換され、薬剤耐性を獲得した形質転 換体は、染色体 DNA中にマーカー遺伝子が組み込まれている。このマーカー遺伝 子は、その両端の purR遺伝子配列と染色体上の purR遺伝子との相同組換えによつ て組み込まれる可能性が高いため、効率よく遺伝子破壊株を選択することができる。
[0035] 遺伝子破壊に用いる破壊型 purR遺伝子は、具体的には、制限酵素消化及び再結 合により purR遺伝子の一定領域を欠失させたり、 purR遺伝子へ他の DNA断片（マ 一力一遺伝子等）を挿入したり、部位特異的変異法（Kramer, W. and Fritz, H. J., M ethods EnzymoL, 1987, 154, 350- 367)またはリコンビナント PCR法（PCR Technology , Stockton Press (1989))や次亜硫酸ナトリウム、ヒドロキシルァミン等の化学薬剤によ る処理（Shortle, D. and Nathans, D., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1978, 75, 2170—21 74)によって、 purR遺伝子のコーディング領域またはプロモーター領域等の塩基配 列の中に 1つまたは複数個の塩基の置換、欠失、挿入、付加または逆位を起こさたり して、コードされるリブレッサーの活性が低下した力、又は purR遺伝子の転写が低下 したものを選択することにより、取得することができる。これらの態様の中では、制限酵 素消化及び再結合により purR遺伝子の一定領域を欠失させる方法、又は purR遺 伝子へ他の DNA断片を挿入する方法が、確実性及び安定性の点から好ましい。欠 失させる purR遺伝子の一定領域は、 purR遺伝子の 5'末端側、内部、 3'末端側の いずれであってもよいが、 purR遺伝子の全長の 90%以上、より好ましくは 95%以上 、特に好ましくは 97%以上であると、リブレッサーの活性が低下する確実性が高くな る。また、 purR遺伝子のコード領域中に塩基を欠失又は挿入させ、フレームシフト変 異を起こさせる場合は、複数箇所で塩基の欠失又は挿入を起こさせること、及び、 3' 末端側で塩基の欠失又は挿入を起こさせることが、リブレッサーの活性を確実に低下 させ得る点で好ましい。
[0036] また、プリンリブレッサーの活性の低下は、上記の遺伝子破壊による以外に、通常 の変異処理法によって、染色体上の purR遺伝子に、細胞中のプリンリプレッサーの 活性が低下するような変異を導入すればよい。例えば、染色体上の酵素をコードする 領域にアミノ酸置換 (ミスセンス変異)を導入すること、また終始コドンを導入すること（ ナンセンス変異）、一〜二塩基付加'欠失するフレームシフト変異を導入すること、遺 伝子の一部分あるいは全領域を欠失させることによつても達成出来る。また、染色体 上の purR遺伝子にトランスポゾンを挿入することによつても、リブレッサーの活性を低 下させることができる。
[0037] また、プリンリプレッサーの活性の低下は、染色体 DNA上の purR遺伝子のプロモ 一ター等の発現調節配列を微弱なものに置換することによつても達成される。プロモ 一ターの強度は、 RNA合成開始の頻度により定義される。プロモーターの強度の評 価法および強力なプロモーターの例は、 Goldsteinらの餘文（Prokaryotic promoters in biotechnology. Biotechnol. Annu. Rev., 1995, 1, 105- 128)等に記載されている。 また、国際公開 W000Z18935に開示されているように、 目的遺伝子のプロモータ 一領域に数塩基の塩基置換を導入し、より微弱なものに改変することも可能である。 さらに、リボソーム結合部位 (RBS)と開始コドンとの間のスぺーサ、特に開始コドンの すぐ上流の配列における数個のヌクレオチドの置換が mRNAの翻訳効率に非常に 影響を及ぼすことが知られている。この RBSの改変は、 目的遺伝子の転写を減少させ ることと糸且み合わせてもよ 、。
[0038] 更に、 purR遺伝子より転写されたメッセンジャー RNAを不安定ィ匕するような変異を 導入した組換え DNAを作製し、これをバチルス属細菌宿主に導入して形質転換し てもよい。
[0039] 後述の purA、 deoD、 guaB又は fbp遺伝子についても、上記と同様にしてコードさ れる酵素の活性を低下させることができる。
[0040] なお、 purR遺伝子は、プリンオペロンを持つ微生物の染色体 DNAから、公知の pu rR遺伝子の塩基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとする PCR 法によって取得することができる。また、プリンオペロンを持つ微生物の染色体 DNA ライブラリーから、公知の purR遺伝子の塩基配列に基づ ヽて作製したオリゴヌクレオ チドをプローブとするハイブリダィゼーシヨン法によって、 purR遺伝子を取得すること ができる。バチルス'ズブチリス 168 Marburg株では、 purR遺伝子の塩基配列が 報告されている（GenBank accession No.D26185 (コード領域は塩基番号 118041〜11 8898)、 NC_000964(コード領域は塩基番号 54439〜55296))。 purR遺伝子の塩基配 列及び同遺伝子によってコードされるアミノ酸配列を、配列表の配列番号 5及び 6に 示す (特開 2004 - 242610号参照）。
[0041] purR遺伝子を得るための PCRに用いるプライマーとしては、 purR遺伝子の一部あ るいは全長を増幅することができるものであればよぐ具体的には配列番号 15 (GAA
GTTGATGATCAAAA)及び配列番号 16 (ACATATTGTTGACGATAAT)に示す塩 基配列を有するオリゴヌクレオチドなどが挙げられる。
[0042] 前記マーカー遺伝子としては、スぺクチノマイシン耐性遺伝子、カナマイシン耐性 遺伝子等の薬剤耐性遺伝子が挙げられる。ェンテロコッカス .フエカリス（Enterococcu s faecalis)由来のスぺクチノマイシン而性遺伝子は、バチルス ジエネチック ストック センター（BGSC)より市販されているェシエリヒア'コリ ECE101株力ら、プラスミド ρ DG1726を調製し、該プラスミド力もカセットとして取り出すことにより、取得することが できる。スタフイロコッカス'ァウレウス（Staphylococcus aureus)のエリスロマイシン而'性 遺伝子は、バチルス ジエネチック ストック センター（BGSC)より市販されているェ シエリヒア'コリ ECE91株から、プラスミド pDG646を調製し、該プラスミド力らカセット として取り出すことにより、取得することができる。カナマイシン耐性遺伝子は、ストレ プトコッカス.フエカリス（Streptococcus faecalis)由来カナマイシン而性遺伝子は、ノ チルス ジエネチック ストック センター（BGSC)より市販されているェシエリヒア'コリ ECE94株から、プラスミド pDG783を調製し、該プラスミドからカセットとして取り出す ことにより、取得することができる。さらに、スタフイロコッカス'ァウレウス（Staphylococc us aureus)のクロラムフエ-コール而性遺伝子は、バチルス ジエネチック ストック センター（BGSC)より市販されているバチルス'ズブチリス 1E17株から、プラスミド pC 194を調製し、該プラスミドを铸型として PCRにより増幅することで、取得することがで きる。
[0043] マーカー遺伝子として薬剤耐性遺伝子を用いる場合は、該遺伝子をプラスミド中の purR遺伝子の適当な部位に挿入し、得られるプラスミドで微生物を形質転換し、薬 剤耐性となった形質転換体を選択すれば、 purR遺伝子破壊株が得られる。染色体 上の purR遺伝子が破壊されたことは、サザンブロッテイングや PCR法により、染色体 上の purR遺伝子又はマーカー遺伝子を解析することによって、確認することができ る。前記スぺクチノマイシン耐性遺伝子、エリスロマイシン耐性遺伝子又はカナマイシ ン耐性遺伝子が染色体 DNAに組み込まれたことの確認は、これらの遺伝子を増幅 することができるプライマーを用いた PCRにより、行うことができる。
[0044] また、プリンオペロンの発現はプロモーター下流に位置する terminator— antiter minator配列（以下、ァテ-ユエ一ター配列と称する）に制御されていることが知られ ている（Ebbole, D. J. and Zalkin, H" J. Biol. Chem., 1987, 262, 8274—8287、 Ebbol e, D. J. and Zalkin, H.， J. Biol. Chem., 1988, 263, 10894— 10902、 Ebbole, D. J. and Zalkin, H.， J. BacterioL, 1989, 171, 2136— 2141)。したがって、ァテ-ユエ一ター配 列を欠損させることで、プリンオペロンの発現量を上昇させることができる。ァテ-ユエ 一ター配列の欠損は purR破壊と同様の方法で行うことが出来る。
[0045] なお、プリンオペロン転写をさらに増大させるためには、上記方法を組み合わせて もよぐ例えば、 purR遺伝子を破壊し、さらに、ァテ-ユエ一ター配列を欠損させたプ リンオペロンをプラスミドで増幅する力、あるいは、このようなプリンオペロンを染色体 上で多コピー化させてもよ 、。
[0046] また、プリン生合成に関与する酵素の活性増強は、プリン生合成に関与する酵素の 調節を解除すること、例えば、前記酵素のフィードバック阻害を解除する方法によつ ても行うことができる（WO99/03988)。
[0047] さらに、プリン系物質の細胞内へ取り込みを弱化することによつても、プリン系物質 生産能を強化することができる。例えば、プリンヌクレオシドの細胞内へ取り込みは、 プリンヌクレオシドの細胞内への取り込みに関与する反応を遮断することによって弱 ィ匕することができる。上記プリンヌクレオシドの細胞内への取り込みに関与する反応 は、たとえばヌクレオシドパーミアーゼに触媒される反応である。
[0048] さらに、プリンヌクレオシドを製造する場合には、プリンヌクレオシド生産能を増強さ せるためにプリン系物質を分解する酵素の活性を低下させてもょ 、。このような酵素 として、例えば、プリンヌクレオシドホスホリラーゼが挙げられる。
[0049] PRPP力ら、プリン生合成に関与する酵素群により生合成されたプリンヌクレオチド は、脱リン酸ィ匕されて、プリンヌクレオシドに変換される。プリンヌクレオシドを効率的 に蓄積せしめるためには、プリンヌクレオシドを更に分解してヒポキサンチン等とする プリンヌクレオシドホスホリラーゼの活性を低下させることが好ましい。すなわち、イノ シンをはじめとするプリンヌクレオシドを基質とするプリンヌクレオシドホスホリラーゼを 弱化、あるいは欠損させるように改変することが望ま U、。
[0050] プリンヌクレオシドホスホリラーゼ活性の低下は、具体的には、バチルス属細菌でプ リンヌクレオシドホスホリラーゼをコードする deoD遺伝子と pupG遺伝子を破壊するこ とによって達成することができる。本発明のバチルス属細菌は、上記のような deoD遺 伝子と pupG遺伝子を単独、または同時に破壊するように改変されたものであっても よい。 deoD遺伝子、 pupG遺伝子は、例えばバチルス属由来の遺伝子（deoD;Genba nk Accession No. NC— 000964 (配列番号 7) , pupG;Genbank Accession No. NC— 0009 64 (配列番号 9) )が利用でき、上記 purR遺伝子破壊と同様の方法で遺伝子破壊株 を取得出来る。
[0051] また、プリン系物質生産能を増強させるために、サクシ-ルー AMPシンターゼの活 性を低下させてもよい。サクシ-ルー AMPシンターゼをコードする遺伝子としては、 pu rA遺伝子が挙げられる。 purA遺伝子としては、例えば、 GenBank Accession No. NC_ 000964 (コード領域は相補鎖の塩基番号 4153460〜4155749) (配列番号 11)で登録 されて!/ヽる塩基配列を有するものが挙げられる。
[0052] さらに、プリン系物質生産能を増強させるために、イノシンモノリン酸 (IMP)脱水素 酵素の活性を低下させてもよい。 IMP脱水素酵素をコードする遺伝子としては、 guaB 遺伝子が挙げられる。 guaB遺伝子としては、例えば、 GenBank Accession No. NC— 00 0964(コード領域は 15913-17376) (配列番号 13)で登録されている塩基配列を有する ものが挙げられる。
[0053] また、プリン系物質生産能を増強させる方法として、プリン系物質を排出する活性を 有するタンパク質をコードする遺伝子を増幅することが考えられる。このような遺伝子 が増幅された細菌としては、例えば、 rhtA遺伝子を増幅したバチルス属細菌が挙げ られる（特開 2003— 219876)。
[0054] 上記のようにして破壊される purR、 deoD、 pupG、 purAもしくは guaB遺伝子、又は発 現が増強される prs遺伝子は、各々保存的バリアントであってよぐ例えば各々配列番 号 6、 8、 10、 12、 14、 16又は 4に示すアミノ酸配列において、 1若しくは数個のァミノ 酸の置換、欠失、挿入、付加又は逆位を含み、かつ、それぞれプリンリブレッサー、 プリンヌクレオシドホスホリラーゼ、サクシ-ルー AMPシンターゼ、又は IMP脱水素酵 素、ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼの活性を有するタンパク質をコードする DN Aであってもよい。前記「数個」は、例えば 2〜50個、好ましくは、 2〜30個、より好ま しくは 2〜 10個である。
[0055] 上記のようなアミノ酸配列に対する変更は、通常、タンパク質の活性を維持するよう な保存的変更である。保存的なアミノ酸置換としては、 serまたは thrによる Alaの置 換； gln、 hisまには lysによる argの 換； glu、 gln、 lys、 his、 aspによる asnの 換； as n、 gluまたは ginによる aspの置 ; serまたは alaによる cysの置 ;asn、 glu、 lys、 hi s、 aspまたは argによる ginの置換； asn、 gln、 lysまたは aspによる gluの置換； proに よる glyの置換； asn、 lys、 gln、 arg、 tyrによる hisの置換； leu、 metゝ val、 pheによる i leの置換； ile、 metゝ val、 pheによる leuの置換； asn、 glu、 gln、 his、 argによる lysの 置換； ile、 leu、 val、 pheによる metの置換； trp、 tyr、 met、 ileまたは leuによる phe の置換； thr、 alaによる serの置換； serまたは alaによる thrの置換； phe、 tyrによる trp の置換; his、 pheまたは trpによる tyrの置換；および met、 ile、 leuによる valが挙げら れる。
[0056] 上記 purR、 deoD、 pupG、 purA、 guaB、 fcp遺伝子、又は prs遺伝子の保存的バリアン トとしては具体的には、各々配列番号 5、 7、 9、 11、 13、 15又は 3に示す塩基配列を 有する DNAと、例えば 70%以上、好ましくは 80%以上、より好ましくは 90%以上、 特に好ましくは 95%以上の相同性を有する DNAが挙げられる。より具体的には、配 列番号 5、 7、 9、 11、 13、 15又は 3に示す塩基配列に相補的な塩基配列を有する D NAと、ストリンジェントな条件下でハイブリダィズする DNAが挙げられる。ストリンジェ ントな条件としては、 60°C、 1 X SSC, 0. 1%SDS、好ましくは、 0. 1 X SSC、 0. 1% SDSに相当する塩濃度で洗浄が行われる条件が挙げられる。洗浄の回数は、 1回又 はそれ以上、好ましくは 2回又は 3回である。
[0057] DNAの相同性の評価は、 BLAST検索、 FASTA検索および CrustalW等の計算 方法によって行うことができる。
BLAST (ベーシックローカルアラインメント検索ツール）は、プログラム blastp、 bias tn、 blastx、 megablast、 tblastn、および tblastxにより使用されるヒューリスティック 検索アルゴリズムであり、これらのプログラムは、 Karlin、 Samuelおよび Stephen F. Alts chulの統計学的方法（「一般的なスコアリングスキームを使用することにより、分子配 列の特徴の統計学的有意'性を評価する方法（Methods for assessing the statistical s ignificance of molecular sequence features by using general scoring schemes)」、 Proc . Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87:2264-68、「分子配列における多重ハイスコアリング セグメントに関する用途および統計学（Applications and statistics for multiple high- s coring segments in molecular sequences)」、 Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1993, 90:58 73-7)を用いて、得られた結果が有意であると見なす。 FASTA検索方法は、 W.R. P earsonにより記載されて!、る (「FASTPおよび FASTAによる迅速かつ高感度な配列 匕較 (Rapid and sensitive Sequence Comparison with FAb Ρ and FASTA 」、 Metho ds in Enzymology, 1990 183:63-98)。 ClustalW方法は、 Thompson J.D.ゝ Higgins D. G.および Gibson T.J.により記載されている（「CLUSTAL W:配列重み付け、位置 特異的ギャップペナルティおよび重み行列法選択による漸進的多重配列ァラインメ ントの感度の改善 (CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple se quence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and w eight matrix choice)」、 Nucleic Acids Res. 1994, 22:4673—4680)。
[0058] また、破壊型遺伝子の作製に用いられる DNAも、 purR、 deoD、 pupG、 purA又は gu aB遺伝子の保存的ノリアントであってもよ ヽ。
[0059] バチルス属細菌の染色体 DNAに目的遺伝子を組み込むには、後述するトランスァ ルドラーゼをコードする遺伝子と同様にして行えばよい。
[0060] (II)フルクトースービスフォスファターゼの酵素活性を低下させるための改変
本発明のバチルス属細菌は、上述のようなプリン系物質生産能を有する菌株をフ ルクトースービスフォスファターゼの酵素活性が低下するように改変することによって 取得することが出来る。ただし、改変の順は問わず、フルクトース—ビスフォスファタ ーゼの酵素活性が低下するように改変したのちにプリンヌクレオチド生産能を付与し てもよい。
[0061] ここでフルクトース一ビスフォスファターゼとは、フルクトース 1, 6—ビスリン酸よりフ ルクトース 6—リン酸を生成する反応を触媒する酵素であり、この反応は糖新生経路 の反応の一部である。「糖新生経路」とは、細胞内のォキザ口酢酸がホスホェノール ピルビン酸カルボキシキナーゼ（EC:4.1.1.49)により、脱炭酸、リン酸化によってホス ホェノールピルビン酸となり、解糖系酵素群の逆反応によりフルクトース 1, 6 ビスリ ン酸まで変換され、更に、フルクトース 1, 6 ビスリン酸は、フルクトース一ビスフォス ファターゼ（EC : 3.1.3.11)によりフルクトース 6 リン酸に変換され、更にグルコース 6 リン酸イソメラーゼとグルコース一 6 フォスファターゼ (EC： 3.1.3.9)によりダルコ一 スを生合成する経路を意味する。
[0062] フルクトースービスフォスファターゼの酵素活性は、以下のような方法で測定出来る 。例えば、フルクトース 6—リン酸の生成をホスホダルコイソメラーゼおよびグルコース 6 リン酸デヒドロゲナーゼで NADPHに変換して測定する方法で測定出来る。
[0063] フルクトースービスフォスファターゼの酵素活性が低下するように改変するには、例 えば、上記の purR遺伝子の破壊で示したように、相同組換え法により、染色体上の フルクトース—ビスフォスファターゼを、正常に機能しな 、遺伝子 (例えば薬剤耐性等 のマーカー遺伝子をフルクトースービスフォスファターゼをコードする遺伝子内部に 挿入した破壊型遺伝子)で置換することにより、達成できる。また、 purR遺伝子につい て述べたように、通常の変異処理法によって、染色体上のフルクトースービスフォスフ ァターゼ遺伝子に、細胞中のフルクトース ビスフォスファターゼの酵素活性が低下 するような変異を導入してもよ 、。
[0064] バチルス'ズブチリスのフルクトースービスフォスファターゼは、配列番号 2に示す 6 71個のアミノ酸力も構成されるタンパク質が挙げられ、該タンパク質をコードする遺伝 子、好ましくは配列番号 1 (i p遺伝子； Genbank Accession No. NC_000964の塩基番 号 4127053〜4129065)の塩基配列を有する遺伝子を改変に用いることができる。な お、 fbp遺伝子は、バチルス'ズブチリス染色体上 323度近傍に存在する。
[0065] フルクトース ビスフォスファターゼと実質的に同一のタンパク質をコードする DNA として具体的には、配列番号 2に示すアミノ酸配列と、好ましくは 50%以上、より好ま しくは 70%以上、さらに好ましくは 80%、特に好ましくは 90%以上、最も好ましくは 9 5%以上の相同性を有し、かつフルクトースービスフォスファターゼの酵素活性を有 するタンパク質をコードする DNAが挙げられる。 [0066] フルクトース—ビスフォスファターゼをコードする遺伝子も、前述の各遺伝子と同様 に、 i p遺伝子の保存的バリアントであってもよい。具体的には、配列番号 1に示すァ ミノ酸配列において、 1若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、付加又は逆位を 含み、かつ、フルクトースービスフォスファターゼの酵素活性を有するタンパク質をコ ードする DNAが挙げられる。あるいは、配列番号 2に示すアミノ酸配列と、好ましくは 50%以上、より好ましくは 70%以上、さらに好ましくは 80%、特に好ましくは 90%以 上、最も好ましくは 95%以上の相同性を有し、かつフルクトース—ビスフォスファタ一 ゼの酵素活性を有するタンパク質をコードする DNAが挙げられる。より具体的には、 配列番号 1に示す塩基配列を有する DNAと、ストリンジェントな条件下でノ、イブリダイ ズする DNAが挙げられる。ストリンジェントな条件としては、 60°C、 1 X SSC, 0. 1% SDS、好ましくは、 0. 1 X SSC、0. 1%SDSに相当する塩濃度で洗浄が行われる条 件が挙げられる。洗浄の回数は、 1回又はそれ以上、好ましくは 2回又は 3回である。
[0067] 上記のようなフルクトース ビスフォスファターゼと実質的に同一のタンパク質をコ ードする DNAは、例えば部位特異的変異法によって、特定の部位のアミノ酸残基が 置換、欠失、挿入、付加、又は逆位を含むように、これら酵素をコードする塩基配列 を改変すること〖こよって得られる。また、上記のような改変された DNAは、従来知られ ている変異処理によっても取得され得る。変異処理としては、変異処理前の DNAを ヒドロキシルァミン等でインビトロ処理する方法、及び変異処理前の DNAを保持する 微生物、例えばェシエリヒア属細菌を、紫外線照射または N—メチル Ν' ニトロ— Ν -トロソグァ-ジン (NTG)もしくは亜硝酸等の通常変異処理に用いられて 、る変 異剤によって処理する方法が挙げられる。
[0068] 目的とする遺伝子は、例えば、バチルス属細菌の染色体 DNAを铸型とし、目的と する遺伝子の塩基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとする PC R法 (PCR: polymerase chain reaction; White, T.J. et al., Trends Genet., 1989, 5, 18 5-189参照）によって、取得することができる。染色体 DNAは、 DNA供与体である細 菌カら、例えば、斎藤、三浦の方法（H. Saito and K.Miura, Biochem.B iophys. Acta, 1963, 72, 619-629、生物工学実験書、日本生物工学会編、 97〜98頁、培風館、 199 2年参照）等により調製することができる。 PCR用プライマーは、バチルス属細菌の公 知の遺伝子配列に基づ 、て、又は他の細菌等で配列が公知の遺伝子間で保存され て 、る領域の情報に基づ 、て、調製することができる。
[0069] バチルス属細菌の染色体 DNAに目的遺伝子を組み込むためのベクターとしては 、 pHV1248 (Prtit, M.-A., et. al, J. BacterioL, 1990, 172, 6736— 6740)等の温度感 受性複製起点をもつベクターや PHSG398 (宝酒造 (株） )、 pBluescript SK— (Str atagene)等の E. coli用ベクター等が挙げられる。
[0070] 目的遺伝子とバチルス属細菌で機能するマーカーを搭載したベクターを連結して 組換え DNAを調製するには、 目的遺伝子の末端に合うような制限酵素でベクターを 切断する。連結は T4DNAリガーゼ等のリガーゼを用いて行うのが普通である。
[0071] 上記のように調製した組換え DNAをバチルス属細菌に導入するには、これまでに 報告されている形質転換法に従って行えばよい。例えば、増殖段階の細胞からコン ピテントセルを調製して DNAを導入する方法（Dubnau, D., and Davidoff- Abelson, R ., J. Mol. Biol, 1971, 56, 209-221)、又は、宿主細胞を、組換え DNAを容易に取り 込むプロトプラストまたはスフエロプラストの状態にして糸且換え DNAを DNA受容菌に 導入する方法（Chang, S. and Cohen, S.N., Molec. Gen. Genet., 1979, 168, 111-11 5)が挙げられる。
[0072] < 2 >プリン系物質の製造法
本発明のバチルス属細菌はプリン系物質を効率よく生産する。したがって、本発明 のバチルス属細菌を好適な培地で培養することによって、細菌の細胞内又は培地中 にプリンヌクレオシド及びプリンヌクレオチドなどのプリン系物質を生成蓄積せしめるこ とがでさる。
[0073] 本発明に用いる培地としては、炭素源、窒素源、無機塩類、その他必要に応じてァ ミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養素を含有する通常の栄養培地を用いて常法により 行うことができる。合成培地または天然培地のいずれも使用可能である。培地に使用 される炭素源および窒素源は培養する菌株の利用可能なものならばよい。
[0074] 炭素源としてはグルコース、フラクトース、シユークロース、マルトース、マンノース、 ガラクトース、ァラビノース、キシロース、トレハロース、リボース、でんぷん加水分解物 、糖蜜等の糖類、グリセロールやマン-トールなどのアルコール類が使用され、その 他、ダルコン酸、酢酸、クェン酸、マレイン酸、フマール酸、コハク酸等の有機酸等も 単独あるいは他の炭素源と併用して用いられる。
[0075] 窒素源としてはアンモニア、硫酸アンモ-ゥム、炭酸アンモ-ゥム、塩化アンモ-ゥ ム、リン酸アンモ-ゥム、酢酸アンモ-ゥム等のアンモ-ゥム塩、硝酸塩または大豆加 水分解物などの有機窒素等が使用される。
[0076] 有機微量栄養素としては、アミノ酸、ビタミン、脂肪酸、核酸、さらにこれらのものを 含有するペプトン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆蛋白分解物等が使用され、生育に アミノ酸等を要求する栄養要求性変異株を使用する場合には要求される栄養素を補 添する事が必要である。
[0077] 無機塩類としてはリン酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等が 使用される。
[0078] 培養条件は、用いるバチルス属細菌の種類による力 例えばバチルス'ズブチリス では、発酵温度 20〜50°C、 pHを 4〜9に制御しつつ通気培養を行う。培養中に PH が低下する場合にはアンモニアガス等のアルカリで中和する。力べして 40時間〜 3日 間程度培養することにより、培養液中にプリンヌクレオシドが蓄積される。
[0079] 培養終了後、培養液中に蓄積されたイノシンを採取する方法としては公知の方法 に従って行えばよい。例えば、沈殿法、またはイオン交換クロマトグラフィー等によつ て単離することができる。
[0080] また、本発明に用いる微生物は、さらにヌクレオシダーゼゃヌクレオチダーゼをコ一 ドする遺伝子を欠損させれば、各々に対応するヌクレオシド又はヌクレオチドを蓄積 させることができ、又イノシンの要求性を付与すれば、これらの生合成系経路上の前 駆体及びその関連物質を蓄積させることができる。
[0081] さらに、本発明の方法により製造されたイノシン又はグアノシンに、プリンヌクレオシ ドホスホリラ一ゼおよびホスホリボシルトランスフェラーゼを作用させることにより、 5' イノシン酸あるいは 5'—グァニル酸が得られる。
[0082] また、本発明の微生物を用いて生産されたプリンヌクレオシドに、ホスホトランスフエ ラーゼを作用させることによってリン酸ィ匕し、プリンヌクレオチド (ヌクレオシド一 5，一燐 酸エステル）を生産することも可能である（特開 2000-295996)。例えば、ェシエリヒア' コリのイノシングアノシンキナーゼをコードする遺伝子を導入したェシエリヒア属細菌 を用いるプリンヌクレオチドの製造法 (WO91/08286号パンフレット）、エキシグォバタ テリゥム ·ァセチリカムのイノシングアノシンキナーゼをコードする遺伝子を導入したコ リネバタテリゥム.アンモニアゲネスを用いたプリンヌクレオチドの製造法 (WO96/3050 1号パンフレット）を採用することができる。
[0083] また、本発明の微生物を用いて生産されたプリンヌクレオシドに、ポリ燐酸、フエ二 ル燐酸、力ルバミル燐酸からなる群より選択された燐酸供与体と、ヌクレオシドー 5 '— 燐酸エステルを生成する能力を有する微生物や、酸性フォスファターゼ (EC 3.1.3.2) を作用させることによって、プリンヌクレオチド (ヌクレオシド一 5 '—燐酸エステル)を 生産することも可能である。ヌクレオシドー 5 '—燐酸エステルを生成する能力を有す る微生物は、プリンヌクレオシドをプリンヌクレオチドに変換する能力を有するものであ れば特に制限されないが、例えば、国際公開パンフレット WO9637603号に記載さ れたような微生物が挙げられる。
[0084] また、特開平 07— 231793に開示されているような Escherichia blattae JCM 1650、 Serratia ficaria ATCC 33105、 Klebsiella planticola IFO 14939 (ATCC 33531)、 Klebs iella pneumoniae IFO 3318 (ATCC 8724)、 Klebsiella terrigena IFO 14941 (ATCC 33 257)、 Morganella morganii IFO 3168、 Enterobacter aerogenes IFO 12010、 Enteroba cter aerogenes IFO 13534 (ATCC 13048)、 Chromobacterium fluviatile IAM 13652、 Chromobacterium violaceum IFO 12614、 Cedecea lapagei JCM 1684、 Cedecea davis iae JCM 1685、 Cedecea neteri JCM 5909などを用いることもできる。
[0085] 酸性フォスファターゼとしては、例えば、特開 2002— 000289に開示されているよ うなものを用いることができ、より好ましくはヌクレオシドに対する親和性が上昇した酸 性フォスファターゼ (特開平 10— 201481参照）ゃヌクレオチダーゼ活性が低下した 変異型酸性フォスファターゼ (WO9637603参照）、燐酸エステル加水分解活性が 低下した変異型酸性フォスファターゼ (特開 2001— 245676)などを用いることがで きる。
[0086] 本発明の微生物を用いて生産されたプリンヌクレオシドをィ匕学的にリン酸ィ匕すること により、プリンヌクレオチドを得ることも可能である（Bulletin of the Chemical Society of Japan 42,3505)。また、微生物が有している ATP再生系を利用して、本発明の XMP 生産能を有する微生物と XMPアミナーゼ活性を共役させることによって GMPを得る方 法、イノシンキナーゼを共役させることによって IMPを得る方法も採用できる（Biosd.Bi otech.Biochem. ,51 ,840(1997) 特開昭 63— 230094)。
[0087] 上記プリンヌクレオチドの製造に用いる、本発明の方法により製造されたイノシン又 はグアノシン、又はプリンヌクレオシドは、精製されたものであってもよいが、プリンヌク レオシドの発酵液又はプリンヌクレオシドを含む粗精製物であってもよい。
[0088] [実施例]
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
実施例 1
[0089] <プリンヌクレオシドホスホリラーゼをコードする pupG遺伝子および deoD遺伝子を欠 損した菌株の作製 >
バチノレス'ズブチリス（B. subtilis 168 Marburg株； ATCC6051)由来で、プリンオペ口 ンリプレッサー遺伝子（purR)、サクシ-ルー AMPシンターゼ遺伝子（purA)、プリンヌ クレオシドホスホリラーゼ遺伝子 (pupG)を欠損し、かつ IMP脱水素酵素遺伝子 (guaB )が弱化され、かつプリンオペロンプロモーター領域、 PRPPシンセターゼ遺伝子（prs) の SD配列を改変した組換え体 KMBS310 (特願 2005— 280186号）を用いて、プリン ヌクレオシドホスホリラーゼ遺伝子 (deoD)を欠損した菌株の作製を、以下のようにし て行った。尚、前記プリンオペロン及び PRPPシンセターゼ遺伝子は、各々プロモータ 一領域及び SD配列の改変により発現が強化されている。
[0090] KMBS16 (purR::spc purA::erm deoD::kan;特開 2004— 242610号公報）より、 Fou etと Sonensheinの方法（J. BacterioL, 1990, 172, 835- 844)により調製したゲノム DNA を用いて、 Dubnauと Davidoff- Abelsonの方法（J. Mol. Biol, 1971, 56, 209- 221)によ り調製した B. subtilis 168 Marburg株のコンビテントセルを形質転換し、 5 μ g/mlの力 ナマイシンを含む LB寒天プレート上で生育するコロニーを取得した。このようにして 得られた 、くつかのコロニーの中でスぺクチノマイシン而ォ性又はエリスロマイシン而ォ性 となっていないコロニーを選択し、それらの内の一株を、 KMBS5 (deoD::kan)と名づ [0091] KMBS5より、 Fouetと Sonensheinの方法（J. BacterioL, 1990, 172, 835-844)により調 製したゲノム DNAを用いて、 Dubnauと Davidoff-Abelsonの方法（J. Mol. Biol, 1971, 5 6, 209-221)により調製した KMBS310株のコンビテントセルを形質転換し、 5 μ g/mlの カナマイシンと 20 μ g/mlのグァニンを含む LB寒天プレート上で生育するコロニーを取 得した。このようにして得られたいくつかのコロニーを選択し、野生型 deoD遺伝子が d eoD::kanで置換されており、かつ KMBS310由来のすべての変異が野生型配列と置 換されて ヽな 、ことが確認できた形質転換体の内の一株を、 KMBS321と名づけた。 実施例 2
[0092] <フルクトース一ビスフォスファターゼをコードする fcp遺伝子を欠損した菌株の作製 と培養評価 >
(l)i p遺伝子欠損株の作製
上述のバチルス'ズブチリス（B. subtilis 168 Marburg株； ATCC6051)由来で、プリ ンォペロンリプレッサー遺伝子（pUrR)、サクシ-ルー AMPシンターゼ遺伝子（purA)、 プリンヌクレオシドホスホリラーゼ遺伝子 (pupG)を欠損し、かつ IMP脱水素酵素遺伝 子（guaB)が弱化され、かつプリンオペロンプロモーター領域、 PRPP synthetase遺伝 子（prs)の SD配列が改変され、かつプリンヌクレオシドホスホリラーゼ遺伝子（deoD) を欠損した組換え体 KMBS321を用いて、フルクトース一ビスフォスファターゼ遺伝子（ i p)を欠損させた菌株の作製を、以下のようにして行った。
[0093] (i) ibp上流域の PCR法による増幅
遺伝子データバンク（GenBank Accession NC_000964および V01277)の情報に基 づき、以下の塩基配列を有するそれぞれ 28 mer、 50 merの PCR用プライマーを作製 した。
[0094] TTCCCTTAGGGTTATTTTCGTTTCAAAA (配列番号 17)
cgtttgttgaactaatgggtgctTTTATGAGCATGTGCATGATAAGGTGA (配列番号 18；小 文字の塩基は PC194上にクローユングされて!/、るクロラムフエ-コール耐性遺伝子（c at)のプロモーター上流域の配列）
[0095] B. subtilis 168 Marburg株の染色体 DNAを铸型とし、上記プライマーを用いて PCR(
98°C, 10秒； 55°C, 30秒； 72°C, 1.5分； 30サイクル； Gene Amp PCR System Model 96 00 (パーキンエルマ一社製)）を行い、 ibp遺伝子 5，末端領域と上流の約 1350 bpを含 む増幅断片を得た。
[0096] (ii)lbp下流域の PCR法による増幅
遺伝子データバンク（GenBank Accession NC_000964および V01277)の情報に基 づき、以下の塩基配列を有するそれぞれ 50 mer、 27 merの PCR用プライマーを作製 した。
[0097] acagctccagatccatatccttcttTTTTAGAGAGTTTGCGGGAGTATCG (配列番号 19；小 文字の塩基は PC194上にクローユングされて!/、るクロラムフエ-コール耐性遺伝子（c at)の構造遺伝子下流域の配列）
TAAAGGTTTTTCGGGATAAGATTGAAA (配列番号 20)
B. subtilis 168 Marburg株の染色体 DNAを铸型とし、上記プライマーを用いて PCR(
98°C, 10秒； 55°C, 30秒； 72°C, 1.5分； 30サイクル； Gene Amp PCR System Model 96
00 (パーキンエルマ一社製)）を行い、 ibp遺伝子 3，末端領域と下流の約 1770 bp含む 増幅断片を得た。
[0098] (iii) cat遺伝子の PCR法による増幅
遺伝子データバンク（GenBank Accession No.V01277および NC_000964)の情報に 基づき、以下の塩基配列を有するそれぞれ 50 merの PCR用プライマーを作製した。
[0099] tcaccttatcatgcacatgctcataaaAGCACCCATTAGTTCAACAAACG (配列番号 21；小 文字の塩基は f p遺伝子 5 '末端領域の配列で配列番号 18の 3 '末端領域と相補する ようにデザインされている）
[0100] cgatactcccgcaaactctctaaaaAAGAAGGATATGGATCTGGAGCTGT (配列番号 22； 小文字の塩基は ibp遺伝子 3 '末端領域の配列で配列番号 19の 3 '末端領域と相補す るようにデザインされて 、る）
[0101] クロラムフエ-コール耐性遺伝子 (cat)が搭載されているプラスミド pC194を铸型とし
、上記プライマーを用いて PCR(98°C, 10秒； 55°C, 30秒； 72°C, 1.5分； 30サイクル； G ene Amp PCR System Model 9600 (パーキンエルマ一社製））を行い、 cat遺伝子を含 む約 980 bpの増幅断片を得た。
[0102] (iv) cat遺伝子力 ¾p領域に挿入された断片のリコンビナント PCR法による増幅 (i)から（iii)で増幅した DNA断片を MicroSpin Column S- 400 (Amersham Pharmacia B iotech)で精製後、適量を混合したものをテンプレートとし、配列番号 17および 20を 用いて、 PCR(98°C, 10秒； 55°C, 30秒； 72°C, 4.5分； 30サイクル； Gene Amp PCR Sy stem Model 9600 (パーキンエルマ一社製））を行い、 cat遺伝子が i p領域に挿入され た増幅断片を得た。
[0103] (V) ibpを破壊したイノシン生産菌株の作製
(iv)で取得した cat遺伝子を挿入した ibp領域 (ibp: :cat)の DNA断片をァガロースゲル 電気泳動後、 目的とする断片をゲルより抽出した。このようにして精製した DNA断片 を用いて、 Dubnauと Davidoff- Abelsonの方法（J. Mol. Biol, 1971, 56, 209- 221)によ り調製した B. subtilis KMBS321株のコンビテントセルを形質転換し、 2.5 μ g/mlのクロ ラムフエ-コールと 20 μ g/mlのグァニンを含む LB寒天プレート上で生育するコ口- 一を取得した。これらのコロニー力も染色体 DNAを調製し、 (iv)に示した PCR法により 、染色体上の ibp領域力 内部がクロラムフエ-コール耐性遺伝子で置換された ibp領 域 (l p::cat)と 2回組換えにより置換した菌株を同定し、これらの内の一株を TABS133 と名づけた。
[0104] (2) ibp遺伝子を欠損したイノシン生産菌株のプリンヌクレオシド生産
ibp遺伝子欠損株 TABS133およびコントロール株である KMBS321を、グァニン 20 mg /Lを含む LB培地プレート上にまんべんなく塗布し、 34°Cでー晚培養した。 1/8プレー ト分の菌体を、 500 ml容の坂口フラスコ中の発酵培地 20 mlに接種し、その後、炭酸 カルシウムを 50 g/Lとなるようにカ卩えて、 34°Cで振とう培養した。培養開始後 72時間目 にサンプリングし、培養液中に含まれるイノシンおよびヒポキサンチン量を公知の方 法で測定した。 ibp遺伝子欠損株 TABS133のイノシンの蓄積は、コントロール株である KMBS321株のそれよりも高かった。
[0105] [発酵培地組成]
グルコース 30 g/L
KH PO 1 g/L
2 4
NH CI 32 g/L
4
豆濃（T- N) * 1.35 g/L DL-メチォニン 0.4 g/L
L-トリプトファン 0.02 g/L
アデニン 0.1 g/L
0.075 g/L
MgSO 0.4 g/L
FeSO 0.01 g/L
4
MnSO 0.01 g/L
アデ力ノール（消泡剤） 0.5 ml/L
(KOHで pH 7.0に調整）
炭酸カルシウム 50 g/L
*:大豆蛋白加水分解物
[0106] [表 1] 表
Figure imgf000028_0001
[0107] ほ S列表の説明〕
配列番号 1 :l p遺伝子の塩基配列
配列番号 2：フルクトース ビスフォスファターゼのアミノ酸配列
配列番号 3： prs遺伝子の塩基配列
配列番号 4：ホスホリボシルピロリン酸シンセターゼのアミノ酸配列
配列番号 5： purR遺伝子の塩基配列
配列番号 6：プリンリプレッサーのアミノ酸配列
配列番号 7： deoD遺伝子の塩基配列
配列番号 8： deoD遺伝子産物（プリンヌクレオシドホスホリラーゼ）のアミノ酸配列 配列番号 9： pupG遺伝子の塩基配列
配列番号 10： pupG遺伝子産物（プリンヌクレオシドホスホリラーゼ）のアミノ酸配列 配列番号 11： pur A遺伝子の塩基配列 配列番号 12：サクシ二ルー AMPシンターゼのアミノ酸配列
配列番号 13： guaB遺伝子の塩基配列
配列番号 14： IMP脱水素酵素のアミノ酸配列
配列番号 15： purR遺伝子増幅用プライマー
配列番号 16： purR遺伝子増幅用プライマー
配列番号 17： ibp遺伝子上流域増幅用プライマー
配列番号 18 :l p遺伝子上流域増幅用プライマー
配列番号 19 :l p遺伝子下流域増幅用プライマー
配列番号 20： ibp遺伝子下流域増幅用プライマー
配列番号 21： cat遺伝子増幅用プライマー
配列番号 22： cat遺伝子増幅用プライマー
産業上の利用可能性
本発明のバチルス属細菌を用いることにより、プリンヌクレオシド及び/又はプリンヌ クレオチドの生産効率を向上させることが出来る。

Claims

請求の範囲
[1] プリン系物質生産能を有し、フルクトースービスフォスファターゼの酵素活性が低下 するように改変されたバチルス属細菌。
[2] 前記プリン系物質がイノシン、キサントシン、グアノシン、アデノシン力もなる群より選 択されるプリンヌクレオシドである請求項 1に記載のバチルス属細菌。
[3] 前記プリン系物質がイノシン酸、キサンチル酸、グァニル酸、及びアデニル酸から なる群より選択されるプリンヌクレオチドである請求項 1に記載のバチルス属細菌。
[4] 前記フルクトースービスフォスファターゼをコードする遺伝子を破壊すること、または 、フルクトースービスフォスファターゼをコードする遺伝子の発現量を低下させること により、フルクトース—ビスフォスファターゼ活性が低下した請求項 1〜3のいずれか 一項に記載のバチルス属細菌。
[5] 前記フルクトース—ビスフォスファターゼをコードする遺伝子が下記 (A)又は（B)に 示すタンパク質をコードする遺伝子である請求項 4に記載のバチルス属細菌。
(A)配列番号 1に記載のアミノ酸配列を有するタンパク質
(B)配列番号 1に記載のアミノ酸配列にぉ 、て、 1若しくは数個のアミノ酸残基の置 換、欠失、挿入、付加、又は逆位を含むアミノ酸配列を有し、かつ、フルクトースービ スフォスファターゼ活性を有するタンパク質。
[6] さらにホスホリボシルピロリン酸シンセターゼ活性が上昇するように改変されたことを 特徴とする請求項 1〜5のいずれ力 1項に記載のバチルス属細菌。
[7] さらに、プリンオペロンの発現量が上昇するように改変されたことを特徴とする請求 項 1〜6のいずれか一項に記載のバチルス属細菌。
[8] プリンオペロンのリブレッサーをコードする遺伝子である purR遺伝子が破壊された ことにより、プリンオペロンの発現量が上昇したことを特徴とする請求項 7に記載のバ チルス属細菌。
[9] さらに、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ活性が低下するように改変されたことを特 徴とする請求項 1〜8のいずれ力 1項に記載のバチルス属細菌
[10] さらに、 IMP脱水素酵素活性が低下するように改変されたことを特徴とする請求項 1〜9に記載のバチルス属細菌。
[11] バチルス属細菌がバチルス ·ズブチリスである請求項 1〜10のいずれか一項に記 載のバチルス属細菌。
[12] 請求項 1〜： L 1のいずれか 1項に記載のバチルス属細菌を培地に培養して、同細菌 の細胞内又は培地中にプリン系物質を蓄積せしめ、同細胞又は培地力 プリン系物 質を回収することを特徴とするプリン系物質の製造法。
[13] プリン系物質がプリンヌクレオシド又はプリンヌクレオチドである、請求項 12に記載 の方法。
[14] 前記プリン系物質がイノシン、キサントシン、グアノシン、アデノシン力もなる群より選 択されるプリンヌクレオシドである請求項 13に記載の方法。
[15] 前記プリン系物質がイノシン酸、キサンチル酸、グァニル酸、アデニル酸力 なる群 より選択されるプリンヌクレオチドである請求項 13に記載の方法。
[16] 請求項 14に記載の方法によりプリンヌクレオシドを製造し、該プリンヌクレオシドに、 ポリ燐酸、フエニル燐酸、及び力ルバミル燐酸からなる群より選択された燐酸供与体 と、ヌクレオシドー 5 '—燐酸エステルを生成する能力を有する微生物又は酸性フォス ファターゼを作用させて、プリンヌクレオチドを生成せしめ、該プリンヌクレオチドを採 取することを特徴とするプリンヌクレオチドの製造法。
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