JP4614947B2 - 粒子を仕分けるためおよび性別で仕分けられた動物の精子を提供するための装置、および方法 - Google Patents

粒子を仕分けるためおよび性別で仕分けられた動物の精子を提供するための装置、および方法 Download PDF

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Description

発明の詳細な説明
発明の背景
本発明は、一般的には、動物精液採取のための装置および方法に関し、より具体的には、フローサイトメトリーを含む様々な技術を用いて、動物子孫の性別を事前に選択するための動物生産業による使用のために、DNA特徴に従って仕分けられた精子細胞の生存能力のある集団のような、１以上の所望の特徴を有する精子細胞で豊富化された精子集団を得る装置および方法に関する。
人工授精(AI)による動物の受精およびインビトロ受精後の胚移植は、確立されたプラクティスである。畜産業において、１以上の所望の特徴を有する子孫に関して生殖結果に影響を及ぼす能力は、明白な利点を有する。一例として、乳牛の生産を確保するために、雌を優先して子孫を選択することが、酪農業において経済的利点となるだろう。米国特許第6,357,307号(Buchanan, et al.)、同第5,985,216号(Rens, et al.)、および同第5,135,759号(Johnson)の開示によって証明されるように、フローサイトメトリーを用いてXおよびY精子細胞を仕分けることによって、この目的を達成しようという試みがなされてきた。しかしながら、これらの試みのいずれも、効果的な受精に対して十分な運動性を有する比較的純粋な性別のある精子細胞の生産量を生産することが可能な商業的に成功する高スループットシステムの導入には至らなかった。
従って、動物生産業において、商業スケールで使用可能な細胞の量を生産するために、特定のDNA特徴（または他の特徴）に基づいて、精子細胞を効率よく単離するための実行可能な高速システムに対する必要性が現存する。また、単離システムによって処理される間、そのような単離された精子の生存を保ち、使用する時までそのような単離された精子の保存が可能である精子処理システムが必要である。本発明は、これらの必要性を扱う。
また、本発明は、より一般的な基盤で、フローサイトメトリーの分野において改良に適用を有する。典型的には、選択された特徴に従って粒子を仕分けるための情報を提供する測定デバイスを介して、一般的に、流体の流れの中に単一ファイルを通過させるため、フローサイトメトリーは、個々の粒子の特徴を測定すると広範に定義され得る。所望により、次いで、粒子は、液滴仕分け、液滴干渉仕分け、および流体スイッチを含むいずれかの数の技術を用いて集団に分けてもよい。もう１つのオプションは、例えば、フォトアブレーションによって、不要な粒子を選択的に破壊することである。
光学系フローサイトメトリーシステムにおいて、光学を使用して、粒子を含有する流れに、光のビーム（例えば、可視光線またはUV光線）を向けてフォーカスし、散乱光および／または粒子からの蛍光発光を含む粒子からの発光を収集する。１つの一般的な光学システムにおいて、例えば、光のビーム（例えば、レーザービーム）は、流れにフォーカスさせ、発光は、一方は散乱光発光を収集するためのレーザーの向きに置かれ、もう一方は蛍光発光を収集するための流れおよびレーザーの両方に直交性に置かれる一対の収集ユニットによって収集される。各収集ユニットは、システムのコストを上げる別個の光検出器を含む。さらに、従来の光学システムにおいて、光検出器は、収集された発光を電気シグナルに翻訳し、これらはアナログシステムを用いて分析されて、粒子の選択された特徴に従って粒子を仕分ける。アナログシステムは、比較的安価であるが、制限された情報しか、シグナルから得ることができない。
他の者達は、精子細胞を処理して、所望の性染色体を有する精子で豊富化された精子細胞の集団を得るのに用いることができる技術の開発を試みた。しかしながら、現存の技術は、本明細書に記載の発明の技術には不十分である。
例えば、Johnson et al.(米国特許第5,135,759号)は、フローサイトメーター／細胞仕分け器を用いた、XおよびY染色体を持つ精子豊富化集団へのDNA含有量による無傷のXおよびY染色体を持つ精子集団の分離を記載する。記載のように、精子は、1時間(39℃)ないし1.5時間(30℃)の期間の間、30ないし39℃の温度にて、DNA選択的色素と組み合わされる。次いで、フローサイトメーターを用いて、精子が色素を励起するレーザービームを通過する時に発光される蛍光の量を測定する。X染色体を持つ精子は、Y染色体を持つ精子より多くのDNAを含有するため、哺乳類のほとんどの種は、約3ないし5%の差を有し、X染色体を持つ精子は、Y染色体を持つ精子より多くの蛍光を発光する。蛍光測定が精子細胞の回転向きによって変動し得るという事実を明らかにするために、２つの光検出器が使用される。第１は、精子細胞が適切に配向されているかを決定し、第２は、XまたはY染色体を有すると精子を仕分けるのに使用される測定をとる。発振器を使用して、精子を含有する流れを、精子がレーザービームを通過する場所の液滴下流に持ってくる。所定の蛍光強度の単一の精子を含有する液滴は、荷電され、収集容器に、静電気的に偏向される。次いで、収集された、性別豊富化された精子集団は、マイクロインジェクション、インビトロ受精、または人工授精に使用される。
また、Seidel et al.(WO 02/43574)は、フローサイトメトリーを用いた、XまたはY染色体を有する細胞の性別豊富化集団への精子の分離を記載する。Seidel et al.は、30℃および40℃の間の温度での細胞の染色を記載する。
米国特許出願公開2003/0157475 A1(Schenk, August 21, 2003)は、XまたはY染色体含有量に従い仕分けられた精子細胞を冷凍保存する方法を記載する。そこに記されるように、精子細胞を冷凍保存する前に、冷凍保存プロセスの間、精子細胞を保護するために、精子細胞に抗凍結剤を添加することが望ましい。例えば、グリセロールは、冷凍保存前に、ウシ精子細胞に一般的に添加される１つの抗凍結剤である。しかしながら、抗凍結剤からより良い保護を得るために、精子細胞を0℃以下の温度に付す前に、抗凍結剤が精子細胞と平衡を保つまで待つのが望ましい。平衡期間の間、抗凍結剤は、細胞膜に浸透して、抗凍結剤によって提供されるいずれかの細胞外保護に加えて、細胞内保護を提供する。従って、米国特許出願公開2003/0157475 A1に記載される冷凍保存方法は、精子細胞が約5℃まで冷却された後、グリセロールを含有する増量剤を精子細胞に添加すると明記する。次いで、精子細胞およびグリセロールは、精子細胞がより低い温度に付される前の1および18時間の間のどこかで、5℃に平衡される。開示は、最善の結果を得るために、３および６時間の平衡期間を推奨する。
残念ながら、3ないし6時間の平衡期間に関する時間および費用は、商用精子仕分けプロセスの収益性に悪影響を及ぼすだろう。さらに、商用精子仕分けプロセスの状況下で、精子の健康は、一般的には、精子の収集および冷凍保存の間の時間を減らすことによって改善される（他の要因は同等である）と考えられる。この観点からも、抗凍結剤の最良の利益を得るのに、長い平衡期間を必要としない冷凍保存技術の利用方法を有することが望ましい。さらに、既知の冷凍保存技術は、減少された精子受精率を示唆する精子運動性に対して有害な影響を持つと報告されている。従って、従来の技術と比較して、精子の健康を保つ冷凍保存技術への必要性が存在する。
発明の概要
本発明は、１以上の望ましい特徴に基づき、粒子を分析、分類および仕分けるための改善されたシステム（方法および装置）に指向される;１つの具体例において、フローサイトメトリーを用いて、細胞をDNA含有量によって正確に単離し仕分けるそのようなシステムの提供;特定の具体例において、システムの出力が、粒子の所望の仕分けられた集団の純度、所望の粒子集団が収集される速度、所望の集団に仕分けされていない所望の粒子の喪失、および他の要因を含む１以上の要因の関数として制御されることを可能にする仕分けプロトコルを組み込むそのようなシステムの提供;１つの具体例において、高速で作業して、動物生産業による商用使用のための性別仕分け精子を提供するそのようなシステムの提供;精子細胞の運動性を含む細胞の有意な悪影響なしに、細胞を仕分けるのに使用することができるそのようなシステムの提供;細胞の運動性を含む細胞に対する最小限の悪影響をもって必要とされるまで、仕分けられた精子細胞を保存するのに使用できるシステムの提供、それが性別された精子の生産に関するように、精子細胞の分類および仕分けの速度および正確性を増加する技術を組み込むそのようなシステムの提供; 落射光学を用いて、分析され、所望により仕分けられた粒子の様々な特徴を検出するフローサイトメトリーの提供;製造に経済的なそのような落射フローサイトメトリーシステムの提供;１つの具体例において、高い生産率にて、一般的に細胞および特に精子細胞のような粒子を分類および（所望により）仕分けるための統合プラットフォームを共有するマルチプルフローサイトメトリーユニットを組み込むシステムの提供;共通の要素およびシステムを共有して、より効率的な作業のために、チャネル間の差を減少させるそのようなマルチチャネルシステムの提供;および１つの具体例において、さらなる仕分けの収益性を評価することができるように、試料の質を決定するために、試料を迅速にテストすることが可能なプロトコルを組み込むそのような仕分けシステムの提供。
加えて、本発明は、蛍光を表すシグナルをデジタル処理するための改善されたシステム（方法および装置）に指向されている;１つの具体例において、バックグラウンド特徴の関数として、アナログ対デジタル変換パルスを検出するためのそのようなデジタルシステムの提供;１つの具体例において、識別パラメータを開始するためのそのようなデジタルシステムの提供;１つの具体例において、波形パルスに対応するデジタル情報を検出するためのそのようなデジタルシステムの提供;１つの具体例において、特徴抽出を含むデジタル情報分析用のそのようなデジタルシステムの提供;１つの具体例において、パルスを分類し、決定境界を規定するためのそのようなデジタルシステムの提供;１つの具体例において、液滴ブレイクオフセンサーを用いて、変換器振幅を制御するそのようなデジタルシステムの提供;および１つの具体例において、商用分配のために、細胞を分配し収集するそのようなデジタルシステムの提供。
さらに、本発明は、精液試料が、収集された精液に存在するよりも、所望の染色体の特徴を有する精液のより大きいパーセンテージを含有する精子試料の冷凍保存を介して、雄の動物から収集された時から動物精液の商用加工用の改善された総合システム（装置および方法）に指向される;１つの具体例において、生存能力のある性別豊富化された精子の商用量の効率的な加工を可能にするそのようなシステムの提供;１つの具体例において、精液特徴における日々および動物対動物の変動に対処するためのシステムの調整を可能にするそのようなシステムの提供;１つの具体例において、85%純度にて、単一のフローサイトメトリーユニットによる約18,000,000の性別豊富化された精子／時間の生産を可能にするそのようなシステムの提供;および１つの具体例において、約１時間の処理時間において、所望の性別特徴を有する収集された精子の10%未満の喪失で、85%純度にて、所望の性別特徴を有する生存能力のある精液試料を得るための精液のバッチ（例えば、雄の動物から収集された精液の量）の完全な処理を可能にするそのようなシステムの提供。
一般的には、本発明は、本出願の請求の範囲に記載された装置および方法に指向される。
本発明の他の目的および特徴は、ある程度明白であり、ある程度は以後指し示されるだろう。
具体例の詳細な記載
下記に記載される具体例は、動物の精液の収集および処理に関し、特に、特定のDNA特徴（例えば、子孫の性別を予め選択するためのX/Y染色体含有量）に従って精子細胞を仕分けるために、家畜からの精液を処理することに関する。下記の結果を達成するために、多くの発明技術が組み合わされる。しかしながら、本明細書中に記載する発明技術は、本発明の範囲から逸脱することなしに、他の適用に提供することができることは理解されるだろう。
総括
図１は、本発明の１つの例示的プロセスの工程の概要を提供するワークフロー図である。プロセスは、工程39にて、１以上の雄の動物（例えば、雄牛）からの正味の精液試料の収集で開始する。精液試料は、工程41にて、同定のために標識され、工程41Aにて緩衝剤と接触され、処理施設に移される。緩衝剤に加えて、例えば、エネルギー源、蛋白質源、抗生物質、および／または、酸化／還元反応を調節する組成物を含めた添加物を、工程41Aにて細胞内に、および／または細胞外に添加してもよい。任意の質制御テストを、工程43にて実施して、各試料の質（例えば、精子運動性）が、最終生成物が、最低限の質基準に見合う可能性が高いことを示すのに十分であることを確証してもよい。任意の洗浄工程は、工程47にて行うことができる。工程47Aにて、処理に使用される染色プロトコルは、様々な染色プロトコルを用いて、試料のアリコットを染色し、次いで各アリコットの仕分け性を分析して、その特定の試料に対する所望の染色プロトコルを同定することによって選択される。選択された染色プロトコルによる染色は、工程49にて、化学色素（例えば、DNA選択的蛍光色素）を含有する染色流体48を各試料に添加することによって行われる。染色する流体に加えて、工程48にて、例えば、エネルギー源、蛋白質源、抗生物質、および／または酸化／還元反応を調節する組成物を含む添加物を細胞内に、および／または細胞外に添加してもよい。試料は、工程51でインキュベートされて、精子による色素の取り込みを可能にする。次いで、試料は、工程53にて、フローサイトメトリーの試料導入デバイスに装填される。試料流体は、工程54にて、シース流体と一緒に、フローサイトメトリーに導入される。シース流体に加えて、工程54にて、例えば、エネルギー源、蛋白質源、抗生物質、および／または酸化／還元反応を調節する組成物を含む添加物を細胞内に、および／または細胞外に添加してもよい。工程55にて、フローサイトメーターは、下記されるように、特定のDNA特徴に従って、精子細胞を仕分ける。仕分けられた精子細胞が、工程57にて、フローサイトメーターの収集システムによって収集されると、それらは、工程58Aにて、収集流体または低温エキステンダーを含有する収集容器に添加される。収集流体に加えて、工程58Aにて、例えば、エネルギー源、蛋白質源、抗生物質、および／または酸化／還元反応を調節する組成物を含む添加物を細胞内に、および／または細胞外に添加してもよい。この時までに、精子細胞は、プロセスを通して添加された様々な流体によって希釈された溶液中にある。従って、所望のDNA特徴を有する精子細胞の集団は、工程58Bにて、商用人工授精における使用のために、濃縮される。低温エキステンダーは、工程58Cにて、濃縮された仕分けられた精子細胞に添加される。低温エキステンダーに加えて、例えば、エネルギー源、蛋白質源、抗生物質、および／または酸化／還元反応を制御する組成物を含む添加物を、工程58Cにて細胞内および／または細胞外に添加してもよい。次いで、精子細胞は、工程59にて、チューブ容器（畜産業では「ストロー」と呼ばれる）にパックし、工程61にて冷凍保存する。冷凍保存された精子は、工程63にて、液体窒素中に保存のためにパックされる。次いで、冷凍保存された精子は、工程65にて、商用流通システムを通して分配され、工程67にて動物畜産家に売られる。動物畜産家は、工程71にて、精子を使用して、雌の動物（例えば、ウシ）を人工的に受精する準備ができるまで、工程69にて、冷凍保存された精子を保存してもよい。下記で論議されるように、本発明の１つの具体例は、実質的に全工程を通しての温度調節を含む。同様に、規定された時間制限内の様々な工程の完了は、本発明のもう１つの具体例の１つの態様である。この全体的なプロセスは、本発明がどのように使用されるかの一例に過ぎず、後記の工程のいくつかを削除し、および／または他は加えることが可能であることが理解されるであろう。また、仕分けられた精子細胞は、マイクロインジェクションまたは他のインビトロ受精に使用して、その後、受容体の雌の動物に胚移植することもできる。
本発明の進歩を取り入れた全プロセスの工程は、下記される。記載される特定のプロセスは、動物の精子(例えば、ウシの精子)を仕分けるという状況である一方、本発明の様々な態様は、精子のいずれのタイプ（ウマ、ブタ、および他）にもより一般的に、細胞のいずれのタイプにもさらにより一般的に、有機および無機、ラテックス粒子、磁気粒子、染色体、細胞下エレメント、プロトプラスト、および澱粉粒子を含む粒子のいずれのタイプにもよりさらに一般的に適用可能であることが理解されるだろう。これらの粒子は、一般的には、0.5ないし200ミクロンのサイズ範囲であるが、本発明の技術は、この範囲に制限されない。
試料収集および希釈
試料収集
仕分けられる精子試料は、ウシ、ウマ、ブタ、または他の哺乳動物源、または解凍された、冷凍保存されていた試料から新たに収集された試料であってもよい。さらに、試料は、単一の精液、同一の哺乳動物からの複数のプールされた精液、または２以上の動物からの複数のプールされた精液であってもよい。
様々な収集方法が知られており、手袋法、人工腔の使用、および電気射精を含む。精子は、好ましくは、収集されるか、あるいは素早く断熱容器に移して、生理的温度（典型的には、約35℃ないし約39℃）からの速い温度変化を避ける。精液は、典型的には、種および特定の動物に応じて、約0.5ないし150億精子／ミリリットルを含有する。
収集の方法に拘わらず、アリコットを、精子試料から採取し、例えば精子濃度、精子運動性、精子進行的運動性、試料pH、精子膜統合性、および精子形態学といった様々な特徴につき評価することができる。このデータは、標準的かつよく知られた手順(例えば、Farrell et al. Theriogenology(1998) 49(4): 871-9; および米国特許第4,896,966号、同第4,896,967号参照)に従って、例えば、Hamilton-Thorn運動性アナライザー(IVOS)を用いた精子の検査によって得ることができる。
希釈
精子試料を、緩衝剤と（固体または溶液の形態で）組み合わせて、精子懸濁液を形成してもよい。なかでも、緩衝剤は、pHまたは浸透圧の有意な変化に対して、懸濁液を緩衝することによって、精子生存性を高めることができる。一般的には、緩衝剤は、細胞に対して無毒で、細胞を染色するのに使用される色素と適合性がある。例示的な緩衝剤は、リン酸塩、二リン酸塩、クエン酸塩、酢酸塩、乳酸塩、およびその組合せを含む。現在好ましい緩衝剤は、TCA、TEST、クエン酸ナトリウム、HEPES、TL、TES、クエン酸一水和物、HEPEST(Gradipore, St. Louis, MO)、PBS(Johnson et al., Gamete Research, 17:203-212(1987))、およびダルベッコPBS(Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)を含む。
１以上の緩衝剤は、下記のように、一緒にまたは添加剤と組み合わされて、緩衝液を形成してもよく、該緩衝液は、精子試料と組み合わされて、精子懸濁液を形成する。また、緩衝液は、下記でより詳細に記載されるように、１以上の添加剤を含有してもよい。例示的な緩衝液は、表Iに記載される。好ましい緩衝液は、約7.0のpHの水中の3%TRIS塩基、2%クエン酸一水和物、および1%果糖(w/v)を含む溶液、表IにおいてTCA #1と指定された溶液、表IにおいてTCA #2と指定された溶液を含む。
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別法として、精子は、代謝阻害剤と組み合わせて、阻害された精子懸濁液を形成してもよい。代謝阻害剤は、精子細胞に、哺乳動物の副睾丸または精巣上体管の流体環境を刺激することによって、例えば雄牛のような哺乳動物の副睾丸の精子細胞を模倣させる。そのような阻害剤は、精子の運動性および代謝活性を減少させるかあるいは阻害するだろう。このクラスの例示的な阻害剤は、例えばSalisbury & Graves, J. Reprod. Fertil., 6:351-359(1963)記載のもののような炭酸系阻害剤を含む。このタイプの好ましい阻害剤は、NaHCO3、KHCO3、およびC6H8O7・H2Oを含む。このタイプのより好ましい阻害剤は、0.204g NaHCO3、0.433g KHCO3、および0.473g C6H8O7・H2O／25mLの精製水(水中に0.097モル/LのNaHCO3, 0.173モル/LのKHCO3, 0.090モル/L C6H8O7・H2O)を含む。
緩衝剤に加えて、精子懸濁液は、一連の添加剤を含有して、精子生存性または運動性を高めてもよい。例示的な添加剤は、エネルギー源、蛋白質源、抗生物質、および酸化／還元反応を制御する組成物を細胞内および／または細胞外に含む。１以上のこれらの添加剤は、精子懸濁液の形成前に、緩衝剤または緩衝液に導入されてもよく、あるいは、別法として、精子懸濁液に別々に導入されてもよい。
１以上のエネルギー源を添加して、精子細胞が、細胞内リン脂質および他の細胞成分を酸化するのを阻害することができる。例示的なエネルギー源は、果糖、グルコース、ガラクトースおよびマンノースのような単糖、およびスクロース、ラクトース、マルトース、およびトレハロースのような二糖、ならびに他の多糖を含む。例えば、得られた精子懸濁液は、（複数の）エネルギー源の約1%(w/v)ないし約4%(w/v)を含み得る。含まれるならば、エネルギー源は、好ましくは、果糖であり、精子懸濁液は約2.5%(w/v)を含有する。
希釈ショックを最小化し、細胞に支持を提供し、懸濁を通して細胞を分散するために、蛋白質源が、緩衝剤、緩衝液、または精子懸濁液に含まれてもよい。例示的な蛋白質源は、卵黄、卵黄抽出物、牛乳（熱加熱均質化およびスキムを含む）、牛乳抽出物、大豆蛋白質、大豆蛋白質抽出物、血清アルブミン、ウシ血清アルブミン、ヒト血清代替補助剤、およびその組合せを含む。アルブミン、より具体的にはウシ血清アルブミン(BSA)が、好ましい蛋白質源である。例えば、もし含まれるならば、BSAは、約5.0%(w/v)未満、好ましくは約2%(w/v)未満、より好ましくは約1%(w/v)未満の量で、最も好ましくは約0.1%(w/v)の量で存在し得る。
BSAのような蛋白質源のみの使用は、懸濁液中の精子細胞のパーセンテージで、受精能獲得のプロセスを開始することができる。このプロセスが、雌の生殖器官で起こるのが好ましい。従って、希釈の間、ならびに、引き続いての染色および仕分けの間、受精能獲得の開始を阻害するために、代替蛋白質源または蛋白質代替物が、精子懸濁液に含まれてもよい。代替蛋白質源または蛋白質代替物は、精子懸濁液中の細胞のより大きいパーセンテージでの受精能獲得の開始を阻害する能力に加えて、BSAのような典型的な蛋白質源の有利な効果を有する。代替蛋白質源の例は、ヒト血清代替物補助剤(SSS)(Irvine Scientific, Santa Ana, CA)およびコレステロールエンハンサーBSAを含み、一方、蛋白質代替物の例は、例えば、一般的に約30,000ないし約60,000の分子量を有する低いないし中程度の粘性ポリビニルアルコールのようなポリビニルアルコールを含む。一般的には、もし含まれるならば、これらの組成物は、緩衝剤または緩衝液の総アルブミン含有量が、一般的には約5.0%(w/v)を超えないBSAに関して、上記開示と同じ量で存在するだろう。
抗生物質を、細菌成長を阻害するために、精子懸濁液に添加してもよい。例示的な抗生物質は、例えば、チロシン、ゲンタマイシン、リンコマイシン、スペクチノマイシン、リンコ−スペクチン（登録商標）（塩酸リンコマイシン−スペクチノマイシン）、ペニシリン、ストレプトマイシン、チカルシリン、またはそのいずれかの組合せを含む。抗生物質は、精液が純物であるか、緩衝化されているか、例えば、本明細書中記載の添加剤のいずれかのようなさらなる物質を含有するかに拘わらず、約50μgないし約800μg／mlの精液の濃度で存在し得る。The Certified Semen Services(CSS)およびNational Association of Animal Breeders(NAAB)は、精子収集および使用に関する抗生物質の使用に関するガイドラインを公布している。
酸化／還元反応を、細胞内および／または細胞外で制御する組成物も、精子懸濁液に含まれてもよい。そのような組成物は、例えば、精子生存性または進行的運動性を維持することによって、精子細胞に保護効果を提供することができる。そのような組成物の例は、例えば、ピルビン酸塩、ビタミンK、リポ酸、グルタチオン、フラビン、キノン、スーパーオキシドジスムターゼ(SOD)、およびSODミミックを含む。精子懸濁液中に含まれるならば、そのような組成物は、精子の健康に悪影響を及ぼさずに、保護効果を達成するのに十分な濃度で存在させることができる。例示的な濃度範囲は、使用される特定の組成物または懸濁液中の精子の濃度のような要因によって、約10μMないし約50mMを含む。例えば、ピルビン酸塩は、約1mMないし約50mM、好ましくは約2.5mMないし約40mM、より好ましくは約5mMないし25mM、さらにより好ましくは約10mMないし15mM、なおさらに好ましくは約15mM、最も好ましくは約10mMの濃度の精子懸濁液中に存在し得る。ビタミンKは、約1μMないし約100μM、好ましくは約10μMないし約100μM、より好ましくは約100μMの濃度の精子懸濁液中に存在させ得る。リポ酸は、約0.1mMないし約1mM、好ましくは約0.5mMないし約1mM、より好ましくは約1mMの濃度の精子懸濁液中に存在させ得る。
仕分けられる細胞の染色
一般的には、精子細胞は、精子細胞、緩衝剤、および色素を含む染色混合物を形成することによって染色することができる。精子細胞は、試料収集および希釈に関して上記したように、新たに得られた精液試料から、あるいは解凍された冷凍保存されていた精液試料から得ることができる。
もし精液試料が解凍された、事前に冷凍保存されていた試料であれば、精子は、好ましくは、染色の直前に解凍される。一般的には、冷凍された精子を含有するストローまたは他の冷凍保存容器は、温度が好ましくは精子細胞膜のガラス転移温度(つまり、約17℃)を上回るが、精子の健康に悪影響を及ぼすほどではない温度の水槽に入れることができる。例えば、冷凍された精子は、冷凍保存溶液を、約17℃ないし約40℃の温度に維持された水槽中に、約30秒ないし約90秒の期間、浸すことによって解凍することができる。
一旦入手されると、精子細胞は、純物の精子の形態で、例えば、試料収集および希釈に関して論議した精子懸濁液から得られる懸濁液の形態で、染色混合物に導入することができる。
色素は、純物の固体または液体組成物の形態であってもよい。また、色素は、緩衝化されていない液体中に溶解または分散させて、色素溶液を形成することができる。別法として、色素は、色素および緩衝剤または精子細胞と生物学的に適合性のある緩衝液を含む色素懸濁液の形態であってもよい。例示的な緩衝剤および緩衝液の範囲は、試料収集および希釈に関して上記される。例えば、使用可能な緩衝剤の中には、約7.0のpHの水中に3% TRIS塩基、2% クエン酸一水和物、および1%果糖を含むTCA緩衝液、または0.204g NaHCO3、0.433g KHCO3、および0.473g C6H8O7・H2O／25mLの精製水(水中に0.097モル/LのNaHCO3, 0.173モル/LのKHCO3, 0.090モル/L C6H8O7・H2O)を含む炭酸系阻害剤溶液がある。すなわち、例えば、染色混合物は、純物精液を色素と組み合わせることによって形成することができる。別法として、染色混合物は、純物精液を緩衝剤または緩衝液および色素と組み合わせることによって形成することができる。さらに、染色混合物は、精子懸濁液を色素と組み合わせることによって形成することができる。
染色混合物は、米国特許第5,135,759号およびWO02/41906に既に記載されるように、１以上のUVまたは可視光線、DNA選択的色素を用いることによって形成することができる。例示的なUV光励起可能な選択的色素は、Hoechst 33342およびHoechst 33258を含み、これらの各々は、Sigma-Aldrich(St. Louis, MO)から商業的に入手可能である。例示的な可視光励起可能な色素は、Molecular Probes, Inc.(Eugene, OR)から商業的に入手可能なSYBR-14およびWO 02/41906記載のビスベンズイミド-BODIPY（登録商標）コンジュゲート6-{[3-((2Z)-2-{[1-(ジフルオロボリル)-3,5-ジメチル-1H-ピロール-2-イル]メチレン}-2H-ピロール-5-yl)プロパノイル]アミノ}-N-[3-(メチル{3-[({4-[6-(4-メチルピペラジン-1-イル)-1H,3'H-2,5'-ビベンズイミダゾール-2'-イル]フェノキシ}アセチル)アミノ]プロピル}アミノ)プロピル]ヘキサンアミド(「BBC」)を含む。これらの色素の各々は、単独でまたは組み合わせて使用されてもよく;別法として、他の細胞透過性UVおよび可視光励起可能な色素を、単独でまたは前記の色素と組み合わせて使用してもよく、但し、色素は、他所記載のように仕分けを可能にする濃度で使用される時、許容できない程度まで、精子細胞の生存性に悪影響を及ぼさない。
染色混合物中のDNA選択的色素の好ましい濃度は、選択された色素に対する細胞の透過性、染色混合物の温度、染色が起こる時間の量、続いての仕分け工程で望まれる豊富化の程度を含む変数の範囲の関数である。一般的には、色素濃度は、好ましくは、実質的に精子生存性に有害な影響を与えずに、適度に短時間で所望の程度の染色を達成するのに十分である。例えば、染色混合物中のHoechst 33342、Hoechst 33258、SYBR-14、またはBBCの濃度は、一般的には、約0.1μMおよび約1.0Mの間、好ましくは約0.1μMないし約700μM、およびより好ましくは約100μMないし約200μMであろう。従って、一組の染色条件下で、Hoechst 33342の濃度は好ましくは約100μMである。もう一組の染色条件下で、Hoechst 33342の濃度は約150μMである。さらにもう一組の染色条件下で、濃度は好ましくは約200μMである。
緩衝剤に加えて、他の添加剤を染色混合物に含んで、精子の生存性または運動性を高めてもよい;これらの添加剤は、精子源、色素源の一部として、または別々に、染色混合物に供されてもよい。そのような添加剤は、エネルギー源、抗生物質、細胞内および／または細胞外で酸化／還元反応を制御する組成物、および精漿を含み、これらの最初の３つは、試料収集および希釈に関して上記され、最後のものは収集流体に関して下記される。そのような添加剤は、それに従って、染色技術の間に添加されてもよい。
特に、細胞内および／または細胞外で酸化／還元反応を制御する組成物を含むと、上昇した染色温度にて、上昇した色素濃度にて、増加した色素期間にて、あるいはそのいずれかの組合せにて、精子生存性を維持するのを助けることが観察されている。これらの組成物およびその試用の例は、緩衝剤および希釈剤に関して上記で論議される。そのような組成物は、それに従って、染色技術の間添加されてもよい。
染色混合物は、温度の範囲のいずれかで維持されてもよく;典型的には、これは約4℃ないし約50℃の範囲内であろう。例えば、染色混合物は、「比較的低い」温度、つまり約4℃ないし約30℃の温度で維持されてもよく;この具体例において、温度は、好ましくは約20℃ないし約30℃であり、より好ましくは、約25℃ないし約30℃であり、最も好ましくは、約28℃である。別法として、染色混合物は、「中間」温度範囲、つまり約30℃ないし約39℃の温度内で維持され得る;この具体例において、温度は、好ましくは約34℃ないし約39℃であり、より好ましくは、約37℃である。加えて、染色混合物は、「比較的高い」温度範囲、つまり約40℃ないし約50℃内で維持され得る;この具体例において、温度は、好ましくは約40℃ないし約45℃であり、より好ましくは約40℃ないし約43℃であり、最も好ましくは約41℃である。好ましい温度の選択は、一般的に、例えば、使用される（複数の）色素への細胞の透過性、染色混合物中の（複数の）色素の濃度、細胞が染色混合物中で維持されるであろう時間の量、仕分け工程で望まれる豊富化の程度を含む変数の範囲によって決まる。
染色混合物中の精子細胞による色素の摂取は、所望の程度のDNA染色を得るのに十分な時間続けることが可能である。該時間は、典型的には、XおよびY染色体生成精子細胞が、２つの間の異なり測定可能な傾向強度に基づき仕分けられるように、色素が精子細胞のDNAに結合するのに十分な時間である。一般的に、これは約160分以下であり、好ましくは約90分未満であり、さらにより好ましくは約60分以下であり、最も好ましくは約5分ないし約40分であろう。
従って、１つの具体例において、染色混合物は、約100μMないし約200μMの濃度で、精子細胞および色素を含めて形成され、染色混合物は、約41℃の温度にて、ある時間、維持される。もう１つの具体例において、染色混合物は、さらに、約10mMの濃度でピルビン酸塩、約100μMの濃度でビタミンK、または約1mMの濃度でリポ酸を含む。
さらにもう１つの具体例において、染色混合物は、約100μMないし約200μMの濃度で精子細胞および色素を含めて形成され、染色混合物は、約28℃の温度にて、ある時間維持される。もう１つの具体例において、染色混合物は、約10mMの濃度でピルビン酸塩、約100μMの濃度でビタミンK、または約1mMの濃度でリポ酸を含む。
さらにもう１つの例において、染色混合物は、精子細胞、0.204g NaHCO3、0.433g KHCO3、および0.473g C6H8O7・H2O／25mLの精製水(水中に、0.097モル/LのNaHCO3, 0.173モル/LのKHCO3, 0.090モル/L C6H8O7・H2O)を含む代謝阻害剤、および約100μMないし約200μMの濃度の色素を含めて形成され、染色混合物は、約28℃の温度にて、ある時間維持される。もう１つの具体例において、染色混合物は、約41℃の温度にて、ある時間維持される。
シース流体
精子細胞を仕分けるために、染色された細胞を、下記のように、フローサイトメーターのノズルへと、試料流体として導入する。プロセスの一部として、試料流体は、典型的には、シース流体によって囲まれる。シース流体は、試料流体中の精子細胞が、下記のように、単一のファイルラインへと引き出されることを可能にする。シース流体は、フローサイトメーターの収集システムによって、精子細胞と一緒に収集され、従って、精子細胞の仕分け後環境の一部を形成する。従って、シース流体が、シース流体による細胞の接触の際に、細胞に保護効果を供するのが望ましい。
シース流体は、一般的には、緩衝剤または緩衝液を含む。シース流体で使用され得る緩衝剤および緩衝液の例ならびにその実例的濃度を、試料収集および希釈に関して開示する。特定の具体例において、シース流体は、約7.0のpHの水中に0.96%ダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水(w/v)、0.1% BSA(w/v)を含む。
所望により、シース流体は、精子生存性または運動性に益するある範囲の添加剤を含有してもよい。例えば、そのような添加剤は、エネルギー源、蛋白質源、細胞内および／または細胞外で酸化／還元反応を制御する組成物、代替蛋白質源、およびポリビニルアルコールを含む。これらの添加剤、およびその例の各々は、試料収集および希釈に関して上記で論議されている。そのような添加剤は、それに従って、シース流体に添加されてもよい。
シース流体は、所望により、仕分け工程前に濾過してもよい。非溶解性粒状物のようなシース流体中に存在し得る汚染物質は、仕分けと干渉し得る。従って、シース流体は、フローサイトメーターへの導入前に濾過してもよい。そのようなフィルターおよびそれを使用する方法は、当該分野でよく知られる。一般的に、フィルターは、約0.1ミクロンないし約0.5ミクロン、好ましくは約0.2ミクロンないし約0.3ミクロンであり、より好ましくは約0.2ミクロンの膜である。
染色された細胞は、染色後のいずれの時点においてもシース流体に導入することができる。典型的には、試料流体中の染色された細胞の流れは、フローサイトメーターのノズル内のシース流体の流れに注入される。下記でより詳細に論議されるように、最初、流体の層流のため、試料流体およびシース流体の接触は実質的にはない。試料流体およびシース流体は、試料流体中の粒子（例えば、染色された精子細胞）が分析された後まで、実質的に別個の流れとして残ることが望ましい。しかしながら、ある時点で、試料流体のシース流体および細胞はもう一方と接触する。例えば、液滴仕分けフローサイトメーター（下記で論議される）において、シース流体および試料流体は、液滴が問い合わせ位置の下流で形成される時に、もう一方と接触し始める。
染色された細胞およびシース流体の導入時、染色された細胞およびシース流体の両方は、約4℃ないし約50℃の温度であってもよい。シース流体および染色された細胞は、同じ温度または、どちらかが他方よりも高い温度である異なる温度であってもよい。従って、１つの具体例において、染色された細胞およびシース流体の導入時、細胞およびシース流体は同じ温度である;例えば、約5℃ないし約8℃のような、例えば「比較的低い」温度;例えば、約25℃ないし約30℃のような「中間の」温度;または約40℃ないし約43℃のような、「比較的高い」温度。もう１つの具体例において、染色された細胞は、シース流体より高い温度であり、例えば、細胞は約40℃ないし約43℃であり、シース流体は、約室温または約5℃である。さらにもう１つの具体例において、染色された細胞は、シース流体より低い温度である。
フローサイトメトリー
本発明の１つの具体例は、フローサイトメトリーにおいて本発明の技術を使用して、精子細胞を分析し仕分ける。図２および３を参照して、本発明のフローサイトメトリーシステムの１つの具体例は、その全体において、参照数字1によって示される。見掛け通り、フローサイトメトリーシステム1は、選択された特徴に従って、精子細胞のような粒子を分類し仕分けるのに有用である。一般的に、システム1は、仕分けられる粒子を含有するキャリアー流体17の供給3、シース流体19の供給7、9と示される仕分け能力を有するフローサイトメトリー装置、および圧力下で、それぞれの供給3、7から担体17およびシース流体19をフローサイトメトリー装置9に送達するための流体送達システム15を含む。フローサイトメトリー装置9は、担体17およびシース19流体を受け取るように、流体17、19を組合せ、圧縮された流体21の流れを作るように、電磁放射線25(例えば、UVレーザー光)のフォーカスされたビームを通って粒子を運ぶ流れ21を方向付けるように、およびフォーカスされたビームを通過する粒子によって発光された電磁放射線31(例えば、蛍光)を分析するように適合される。また、装置9は、評価される粒子を含有する液滴33に流れ21を壊し、液滴33中に含有された粒子の１以上の特徴に従って、前記測定に基づき、液滴33を仕分けるように機能する。本発明を使用して、いずれのタイプの粒子も分析し、好ましくは仕分けることができる一方で、それは細胞の１以上の所望の特徴（例えば、サイズ、DNA含有量、形状、密度、遺伝子配列等）に従って、細胞を仕分けるのに特に適用を有する。本発明は、下記でより詳細に論議されるように、インビボまたはインビトロ人工授精のための動物生産業による商用使用のために、動物の精子細胞を仕分けるのに特に適している。
シングルチャネル仕分け装置および方法
フローサイトメトリー装置
図3で示されるフローサイトメトリー装置9は、実質的にシングルファイル中の細胞および精子細胞の場合、実質的に記載されるであろう所望の配向の精子細胞の非対称性ヘッドとの圧力下で、ノズルオリフィス103を通って、粒子(例えば、染色された精子細胞)を含有する流体の流れ21を送達するための101と示されたノズルシステムを含む。慣用的なフローサイトメトリー液滴仕分けシステムでのように、ノズルオリフィス103から間隔を設けられた「液滴破壊」位置107にて、個々の細胞を含有する液滴33へと流れ21を破壊する流体の流れ21へ音響エネルギーを導入するために、ノズルオリフィス103に反対に提供される。また、システム1は、記載される具体例において、ノズルオリフィス103および液滴破壊位置107の間にある「問い合わせ」位置115にて、流体の流れ21に電磁放射線25(例えば、350-700nm UVまたは可視レーザー光)のビームをフォーカスするための109と示された光学システムを含む。従って、記載される具体例は、ジェットインエアーシステムである。他の具体例において、問い合わせ位置107は、ノズルオリフィス103内またはオリフィス103から上流であり得る。いずれにしても、細胞は問い合わせ位置107にて、光のビーム25を通過するように調整され、その結果、細胞中の化学染色（または他の報告媒体）が励起されて、ビーム25(例えば、もし照明光25が、約350ないし370nmの波長を有するなら、蛍光発光31は約460nmの波長を有し得る)のものと異なる波長を有する蛍光発光31が生じる。光検出器117は、これらの発光31を検出し、処理され、精子細胞のX/Y染色体の含有量のような選択された特徴に従って、細胞を分類するのに使用される電子シグナルへとそれらを変換するように操作可能である。さらに、フローサイトメトリー装置9は、液滴33中に含有された細胞の分類に従って、異なる群または集団(例えば、２つの集団123、125)に、液滴33を仕分けるための119と示された仕分けシステムおよび液滴33を収集し、異なる集団123、125の隔離を維持するための2201(図2)と示された収集システムを含む。
システム1の操作は、記載される様式で、システム1の要素の様々な機能を制御するマイクロプロセッサーまたは他のデジタルまたはアナログ制御および／またはプロセッサー、またはその組合せのようなプロセッサー131によって制御される。また、有意義なことに、プロセッサー131は、粒子分析情報に応答して、選択された制御および粒子の仕分けられた集団のうちの１つの所望の純度、１以上の他の集団中の所望の粒子の量（またはパーセンテージ）と比較した集団のうちの１つの所望の粒子の許容される量（またパーセンテージ）を含めた異なるパラメーター、および後記で論議される他のパラメーターを含む仕分け方法に基づき、システム1のアウトプットを制御する。
システム1の様々な要素は、下記に詳細に記載される。
ノズルシステム
図4および5を参照して、ノズルシステム101は、１つの例示的具体例において、それを通る中心縦内径135を有する略円筒型フローボディー133、および漏斗形状ノズルボディー139を有するフローボディー133上のノズル137を含む。通路141は、フローボディー133の内径135と同軸のノズルボディー139を通って延び、ノズル137の前端にて、前記のノズルオリフィス103で終わる。ノズルボディー139は、フローボディー133の前端にて、螺合突起またはスタッド149を螺合可能に受け取って、ノズル137をフローボディー133に取り外し可能に接続するために、後端にて、内方螺合穴ぐり145を有し、ここに該接続は、O-リングシール155によってシールされる。ノズルは、他の方法でフローボディーに取り外し可能に接続されるか、あるいは別法として、部分が１片として統合し形成することができることが理解されるだろう。
フローボディー133の内径135に同軸で置かれた導管157の手段によって、粒子はノズル137に送達される。導管157の外径は、輪形隙間が導管157周りに形成されるように、内径135の内径未満である。１つの特定の具体例において、ノズル137の後部の穴ぐり145へと延びる前部を有する管状針である。導管157の後端は、キャリアー流体15(例えば、精子細胞を含有する染色混合物)の導管157への送達のために、流体送達システム15に接続される。導管157の周りの輪形隙間167は、フローボディー133の半径内径173の手段によって、輪形隙間167へのシース流体19の送達のために、流体送達システム15に接続される。図3および5に示されるように、任意の第二の半径内径183は、ノズル137へのさらなるシース流体19の供給のために、もう１つのライン(図示せず)に輪形隙間167を接続するフローボディー133において提供され得る。
慣用的なフローサイトメトリーシステムにおけるように、シース流体19は、導管157を取り囲む輪形隙間167に導入される。導管157のチップを流れる時のシース流体19の速度は、導管157を出て行くキャリアー流体17の速度よりずっと高く、そこに含有されるキャリアー流体17および細胞(例えば、精子細胞)は、ノズル137のオリフィス103に向かって、シース流体19によって加速される。この加速は、光学システム109による別の分析のための単一ファイル配置において、細胞を間隔を開けて置くように機能する。シース流体19はキャリアー流体17を取り囲み、その結果、キャリアー流体17の中心コア189を有する流体の流れ21および中心コア189を取り囲むシース流体19の外側の同軸シース191が生じる(図6参照)。フローサイトメトリーの当業者によって理解されるように、中心コア189の層流および水力学的フォーカシングは、ノズル137中でシース19およびキャリアー流体17の少しの混合で、コア189に粒子を制限する傾向がある。さらに、液滴33が破壊位置107にて形成される時まで、流れ21がノズルシステム101を通るように、中心コア189はシース191内で実質的に無傷のままである。同軸流れのこのタイプは、分析される粒子が流れの比較的狭いコア189内に制限されるため、フローサイトメトリーに特に適している。結果として、流れ21の中心またはコア189上にフォーカスされた光25のビームは、実質的に一時に１つずつ分析することができるように、粒子を照らすだろう。十分に狭い直径内にコア189を制限することによって、コア流体189において、より均一な粒子の照明を得ることができる。良い分析結果のため、粒子を含有するコアの直径は、望ましくは、7ないし20ミクロンの範囲内、より望ましくは7ないし14ミクロンの範囲内であるべきである。コア流189の直径は、シース流体19の送達の速度に対してキャリアー流体17の送達の速度を調整することによって、増加または減少することができる。
細胞の向き
分析結果を最適化するため、光学システムからの光ビームを通過する時、非対称な形状を有する粒子が所望の向きにあることが望ましい。当業者に知られるように、対称な粒子からの蛍光発光は、異方性のである傾向がある（つまり、発光の強度は、全方向において均一でない）。本明細書中で使用されるように、用語「所望の向き」は、70%ないし100%、より望ましくは80%ないし100%の範囲、さらにより望ましくは90%ないし100%の範囲、最も望ましくは95%以上の正確性で処理システムが異なる特徴を有する細胞間を識別するのを可能にする向きを意味する。
ポイントを説明するために、ウシ精子細胞201は、図6および7で示される。典型的には、細胞は、比較的平坦で広い対向面207および狭いエッジ209、細胞の着色DNAマスを含有するヘッド205の核213、および有効な受精に必要な運動性を供するヘッド205から延びるテイル215を有する。平均的なウシ精子細胞201は、約8μmのヘッドの長さ219、約4μmのヘッドの幅221、ヘッドの前から約100μmのテイルの端までの全長223を有する。平均的なウシ精子細胞201において、核213は、ヘッド容量のほとんどを占有し、精子ヘッド205よりわずかに小さいだけである。従って、核の長さ217は、長さ約8μmであるヘッドの長さ219とほぼ同等である。ウシにおいて、精子細胞201のX/Y染色体は、ヘッド205の縦中線または赤道211または中心の下およびすぐ隣の核225(図6)の領域に局所化されることが観察されている。より詳細には、この赤道直下付近の領域225は、核213の下半分（テイル215に向かって）上の核の長さ217の約20%以下、よりさらに詳細には核213の下半分上の核の長さ217の約10-15%以下、さらにより詳細には核213の赤道211下約1.0-1.5μm以下延びる。
精子細胞が、励起ビーム25を通過する時、細胞が実質的にシングルファイルであり、各細胞201が細胞間の向きの変動を減少させるように、実質的に同様に向いて、従って、細胞のより均一な測定を供するのが望ましい。また、細胞がXおよびY細胞の間に正確な識別を可能にする向きを有するのが望ましい。望ましくは、この向きは、精子細胞201の長さが、流れの流量227の方向(ヘッドが先(図6に示される)またはヘッドが後のいずれか)と大体並んでいて、細胞の狭いエッジ209よりはむしろ、図7に模式的に示されているように、光学系109からの光ビーム25が、一般に広い側で細胞の広い面207に当たる角エンベロープ229にヘッド205が入るように、精子細胞201のヘッド205がその縦軸上で回転される。好ましくは、所望の向きを規定するエンベロープ229は、流れ21を通って横方向に取った断面で見えるように、入る光ビーム25と略垂直な面Pに対してR1の角度範囲を通っての精子細胞201の回転によって生じる。範囲R1は、好ましくは0ないし90度であり、より好ましくは0ないし60度であり、さらにより好ましくは0ないし30度である。本発明のノズルは、90%以上までの正確性をもって、この所望の向きを達成するように操作可能である。
精子向きの許容度(つまり、角度範囲R1によって規定されたエンベロープ229のサイズ)は、精子細胞からの蛍光発光31を収集するのに使用されるレンズの開口数に関する。図7に示される具体例において、例えば、光学システム109は、55度の立体角によって規定された蛍光発光31検出容量579を有する。精子ヘッド205の回転向きが、精子がビーム25を通る時にR1によって規定されたエンベロープ229の外側にある時、精子ヘッド205のエッジ209からの比較的より強い蛍光発光31は光学システム109によって収集され、プロセッサー131が蛍光発光31の強度を精子細胞201のX/Y染色体含有量と相関させることを防ぐ。しかしながら、問い合わせ位置115を通過する時に、精子ヘッド205の回転向きがエンベロープ229内にある限り、光学システム109は精子ヘッド205の狭いエッジ209からの比較的より強い蛍光発光31を収集しない。従って、図7に示される具体例において、精子ヘッド205の狭いエッジ209が角度R1内に制限される限り、精子細胞の向きは、比較的より強いエッジ蛍光発光の収集を生じない。収集容量579の立体角は、より小さい開口数を持つレンズを用いることによって減少させ、それにより角度R1およびあまり配向されていない精子の許容度を増加させることができる。しかしながら、これは、また、光検出器によって検出された発光31の強度を減少させることによって、蛍光発光31の測定に影響を及ぼし得る光学システム109によって収集され得るフォトンの数を減少させる。同様に、もし光学システム109が高い開口数を有する蛍光発光31を収集して、光検出器によって検出された蛍光発光のより強い強度を得るならば、精子向きに対する許容度は減少する。従って、本発明のシステムを設計する際、精子向きに対する許容度およびレンズ開口数の間の均衡をとることが必要である。最適な均衡は、システムの配向能力および光学感度によって決まるだろう。１つの望ましい具体例において、例えば、開口数0.65を有するレンズが使用される。
ノズル設計
１つの具体例において、図8および9に示されるように、穴ぐり145から下流のノズルボディー139の内部231は、ノズルオリフィス103に向かう下流方向の流体の流れ21の速度を次第に加速するための第１、第２および第３の軸方向にテーパーされた領域235、237、239を含む内面233を有する。前述のように、この加速は、単一ファイル形成を規定して、実質的に一度に１つの粒子が分析されるように、流れ21中の粒子(例えば、細胞)の間隔を設けるように機能する。これらの領域のうちの少なくとも２つ、および好ましくは全ての３つの235、237、239は、図9A-9Hおよび図9J-9Kに示されるように、ノズル137の縦軸247に対して直角での断面において略楕円形形状を有する。また、ノズルボディー139の内面233は、テーパーされておらず、第１の３つの領域235、237、239から下流および１つの具体例において、ノズルボディー139の前面の穴ぐり257に固定された別々のオリフィス部材255において形成されたノズルオリフィス103の直ぐ上流の第４の領域249を有する。１つの具体例において、第１の235および第２の237領域の略楕円断面形状は、実質的に同一の方向に配向されて、第１のねじりゾーン259を規定し、第２のねじりゾーン261を構成する第３の領域239の略楕円断面形状は、第１の235および第２の237領域の略楕円断面形状に対する角度(例えば、約90度)に配向される。配向は、ノズルボディー139の内面233が、流体の流れ21にねじり力を適用し、それによりノズルオリフィス103を通過する時に、前記の所望の向きに精子細胞を向かせる傾向があるようなものである。好ましくは、第１のねじりゾーン259は、3.0-4.5mm、好ましくは約3.6mmの軸の長さ273を有し、ゾーン259を構成する第１の235および第２の237テーパー領域は、大体同等の軸の長さ275、277(例えば、約1.8mm)を有する。第２のねじりゾーン261は、3.5-5.0mm、好ましくは約4.45mmの軸の長さ279を有する。第４の領域249は、好ましくは、形状が略円筒型である。第１の235、第２の237および第３の239領域の境界にある各略断面楕円形状A-D(図8)は、図8および下記の表1に示される例示的な寸法の長軸直径および短軸直径を有する。
Figure 0004614947
上記の寸法は例示的であって、他の寸法および形状も適切であり得ることが理解されるであろう。機能的には、外径および内径の間の割合の変化、および領域の楕円形状の異なる向きは、各細胞201に対して作用する横力を作り、その縦軸に対して細胞201を回転させる傾向のあるねじり力271を適用して、その広い面207が第１のねじりゾーン259における短軸と並ぶように、細胞が緩やかに曲げられ(例えば、90度)て第２のねじりゾーン261の短軸と並ぶようにする。また、テーパー表面235、237、239の各々は、ノズル101を通って流れる流れ21(および細胞)を加速させるように働く。１つの具体例において、第１領域235および第３領域239においてより緩慢に増加し、第２の領域237においてより速く増加する。さらに一例としては、第１の領域235のテーパーは約11-14度の範囲であってよく;第２の領域237のテーパーは約42-48度の範囲であってよく;第３の領域239のテーパーは約8-12度の範囲であってよい。ノズルボディー139は、成型プラスチック(ABS)または金属のような適当な材料から形成される。
オリフィス部材255(図8)は、好ましくは、サファイアのような、加工できるか、さもなければ正確な寸法で形成され得る強固で摩耗耐性のある材料から形成される。オリフィス部材255自体は、１つの具体例において、直径が約0.92mmから約0.060mmまで減少する略円形断面の円錐上流表面309を有し、約0.54mmの軸の長さ317および約39度のテーパー角度を有する。また、オリフィス部材255は、約0.060mmの直径および約0.36mmの軸の長さ327を有する略円筒型下流表面315を有する。これらの寸法は例示的なだけであって、オリフィス部材255は他のサイズおよび形状を有し得ることが理解されるだろう。例えば、上流表面309の形状は、断面では略楕円形（長円形）であってもよく、ノズル137の下流末端のオリフィス103の直径は40ないし100ミクロン以上までの範囲であってもよい。オリフィス103のサイズは、ノズル101を出て行く細胞が、流れ21のコア189内の実質的に単一ファイル形成にあり、前述のように実質的に所望の向きにあることが望ましい。例えば、精子細胞の場合、下流末端で約60-62ミクロンの直径を有するオリフィス103が適当であることが分かっている。好ましくは、ノズルオリフィス103は、流れ21をさらに加速し、記載されるように、最適な細胞間隔、細胞の向きおよび液滴33形成のために、流れ21を形付け、大きさにするように働く。
ノズル137を出る時の細胞の速度は、シース流体19がノズルシステム101に導入される時の圧力を含めた様々な要因によって決まるだろう。20psiの圧力にて、細胞は、流れ21のコア189にて実質的に同様に配向された細胞を含有する略円筒型流れ21として、約16.6m/sの速度にて、上記具体例のノズルオリフィス103を出て行くであろう。30psiのシース圧にて、細胞速度は約20.3m/sであろう。異なるシース流体19圧にて、流れ21の速度は変動するだろう。
コア流のねじりゾーンへの導入
粒子の改善された向きは、粒子がノズルの中心からズレている位置にありつつ、粒子がノズルによって生じる水力学的配向力に付されるように、その少なくとも一部がノズルの中心からズレた流路に沿って、配向させるべき粒子（例えば、精子細胞）を含むコア流189を向けるように、配向ノズルを通る流体流れ21の流動を変化させることによって配向させることができる。コア流189をオフセット流路に沿って向けることは、従来のノズル(つまり、いずれのねじりゾーンも有さないもの)における粒子の配向を改善し得る。多くのノズルにおいて、ノズルの縦軸から移動しているため、所与の位置はノズルの中心からズレていると決定することができる。また、流体の流れが通って流れるノズルの断面積の幾何学的中心から移動されているため、特定の位置がノズルの中心からズレていると認識することができる。
多くの技術を使用して、コア流189を、ノズルの中心からズレた流路に沿って向けることができる。例えば、配向バッフルはノズルに置かれて、コア流をノズルの一側面へ偏向することができる。同様に、試料粒子を含有するコア流189を導入するための導管157は、ノズルの従来の中心からオフセット位置へと移転されてもよい。さらに、オフセット試料導入導管157は、配向バッフルと併せて使用され得ることが考えられる。配向バッフルの使用およびオフセット試料導入導管の使用の例示的な具体例は下記で論議される。
配向バッフルおよび／またはオフセット試料導入導管157の使用によって達成される粒子(例えば、精子細胞)の改善された配向は多くの要因によるものであり得る。一要因は、コア流189の偏向および／または断面流量範囲のサイズおよび形状の変化が、非対称の粒子を配向する傾向のある流体力の適用を招くことである。(Kachel, et al., Histochemistry and Cytochemistry, 25(7): 774-80(1977))。もう１つの要因は、非対称の粒子(特に精子細胞)が、固体表面近くで、流体の流れ中を流れるように配向する傾向があることが分かっていることである。従って、ノズルの内面またはバッフル表面近くにあるようにコア流189を方向付けることによって、粒子の改善された配向を得ることができる。さらに、バッフルおよび／またはオフセット試料導入導管を、さらなる配向する力(例えば、ねじり力)を非対称の粒子に適用する配向ノズルと併せて使用することができる。その場合、配向されるべき粒子が１以上のねじりゾーンによって生じるねじり力に付されつつ、該粒子を含有するコア流が、ノズルの中心からズレている流路に沿って流れるように、流体の流れを方向付けるように操作可能である。
配向バッフル
図10-13は、上記の配向ノズル137に位置する2001と示された１つの例示的な配向バッフルを示す。しかしながら、バッフル2001は、本発明の範囲から逸脱することなしに、配向しないノズルを含む異なるノズルと併用することができる。バッフル2001はオリフィス103から上流および試料注入針157から下流のノズルに位置する。図14および15を参照すると、バッフルは、バッフルホルダー2005によって所定位置に保持されたバッフルプレート2003を含む。示された具体例において、バッフルプレート2003は略L字型であり、実質的に剛直で、耐久性の耐食材料（例えば、ステンレス鋼）で構築される。L字型プレート2003は、望ましくは相互に実質的に垂直(例えば、垂直であることの約5度以内）である上流レッグ2007および下流レッグ2009を有する。図面において示される例示的な具体例において、L字型プレート2003の２つのレッグ2007、2009は、ノズル137(図11)の縦軸2017に垂直なライン2015にて交差する。図14に示されるように、交差2015のラインは、また、バッフルホルダー2005の縦軸2057から短距離2033(例えば、約0.3mm)間隔を設けられる。L字型プレート2003の上流レッグ2007は、図15に示されるように、ノズル137の縦軸2017から離れた交差2015のラインから、途中ずっとバッフルホルダー2005の衛士まで延びる。従って、上流レッグ2007は、バッフルホルダー2005の形状に近似した曲面エッジで形成される。図14で示されるように、上流レッグ2007は、バッフルホルダー2005の縦軸2057に垂直から約15-25度の角度AA傾いている。L字型プレート2007の下流レッグ2009は、バッフルホルダー2005の縦軸2057の垂直から約60ないし80度の範囲にある角度BBにて、約2.0ないし2.5mmの距離2025だけ、２つのレッグ2007、2009の交差2015のラインから下流に延びる。
バッフルホルダー2005は、図10-13に示されるように、ノズル137の内側に嵌合するような大きさ・形状とされる。バッフルホルダー2005は、好ましくは、成型可能な材料(例えば、ポリプロピレン)製であるが、バッフルホルダー2005は、本発明の範囲から逸脱せずに、他の材料から構築されていてもよい。図14および15において示されるように、例示的な具体例で使用されるバッフルホルダー2005は、一般的に、全体の長さ2027が約4.0-4.5mmの中空円筒殻として形作られる。バッフルホルダー2005は、約5-6mmの外径2029および約2.5-3.5mmの内径2031を持つ。もしバッフルホルダー2005が成型されるならば、抜きしろ(図示せず)を、(例えば、バッフルホルダーが、射出成型機械から容易に取り出せるように)ホルダー2005の表面に設けることができる。例示的なバッフルホルダー2005の上流端2035は、L字型プレート2003の上流レッグ2007と同じ角度AAで傾いた表面2037を有する。L字型プレート2003の上流レッグ2007は終端となり、バッフルホルダー2005の傾いた表面2037によって支持される。L字型プレート2003の下流レッグ2009のサイドエッジ2039(図15)は、バッフルホルダー2005に部分的に埋め込まれて(例えば、スロットで受け取られて)、下流レッグ2009がバッフルホルダー2005の一側面から他方にわたる位置に、バッフルプレート2003を維持する。例示的な具体例において、下流レッグ2009の下流エッジ2041は、バッフルホルダー2057の縦軸2057に略垂直な直線を形成する。下流レッグ2009の下流エッジ2041およびバッフルホルダー2005の柱面2051の間には、ギャップ2049(図14)がある。ギャップ2049は、L字型プレート2003のレッグ2007、2009によって規定された容量2053およびバッフルホルダー2003の内部円筒面2051およびノズル137の内部容量2055の残りの間の流体連絡を供する。
L字型プレート2003を上記の位置に保持するように、バッフルホルダー2005は、望ましくは、ノズル137の縦軸2017と整列したバッフルホルダー2005の縦軸2057を有するノズル内に置かれる。望ましくは、例示的なバッフルプレート2003は、プレート2003の２つのレッグ2007、2009の交差2015のラインが、図16に示されるように、楕円Dの長軸を通るライン2059に平行であるように、回転可能に向けられる。しかしながら、例示的なバッフル2001は、また、L字型プレート2003の２つのレッグ2007、2009の交差2015が、図17に示されるように、楕円Dの長軸を通るライン2059に垂直である時に上手く機能する。さらに、本発明の範囲から逸脱することなしに、バッフルはいずれかの回転向きを有し得る。図12に示されるように、例示的な具体例の試料注入針157は、望ましくは、バッフル2001の最上流部2035から約0.25-1.0mm上流の距離2061である。より望ましくは、試料注入針157は、バッフル2001の最上流部2035から約0.55-0.65mm上流である。
バッフルホルダー2005は、いずれかの数の方法で、ノズルに対して所望の位置で維持され得る。図14を参照して、バッフルホルダー2005の下流端2067は、ノズル137のさらに下流に篏合するように、段をつけられる。ホルダー2005の段をつけられた下流端2067は、円形状であり、ノズル137の楕円形の内面233で途切れる。従って、ノズル137の内面233およびバッフルホルダー2005の間の接触は、図13に示されるように、２つの点2069に制限される。一対のO-リング2071は、フローボディー133(図11-13)のノズル137および螺合突起149の間のバッフルホルダー2005辺りに位置し、漏れに対してノズルシステム101を閉じる。O-リング2071は、Viton（登録商標）、またはいずれかの他の同様の材料で出来ていてもよい。２つのO-リング2071は、ノズル137が螺合突起149に止められて、流体密封のシールを供するように、圧縮される。バッフルホルダー2005の長さ2027のため、単一のO-リングをノズル137およびフローボディー133の間の空間内に圧縮することができないので、２つのO-リング2071が例示的な具体例において使用される。いずれの数のO-リングまたは異なるタイプのシールも、本発明の範囲を逸脱することなく用いることができる。但し、O-リングの数、またはシールの他のタイプは、ノズルがフローボディー133に螺合した場合に液密シールとなるように選択されるものとする。これは、ノズル13、フローボディー133、バッフルホルダー2005、およびO-リング2071のサイズおよび形状ならびにシールのタイプを含めた多くの要因によって決まるだろう。また、O-リング2071は、所望の位置にバッフルホルダー2005を維持する。O-リング2071はバッフルホルダー2005辺りの空間を占拠し、それによりノズル137内のバッフルホルダー2005の左右の動きを制限する。また、O-リング2071およびバッフルホルダー2005の間の摩擦力は、バッフルホルダー2005の回転動作に抵抗する。
ノズル137が、図12に示されるように、フローボディー133上で閉められると、この具体例においてボスの形態であるフローボディー133からの螺合突起149の下流端2077は、バッフル2001の最上流部2035にほぼ等しい。結果として、バッフルホルダー2005は、フローボディー133(バッフルホルダー2005の上流端2035)および(バッフルホルダー2005の下流端2067の)ノズル137の内面233の間に、軸方向に捕らえられる。他の保持メカニズムを使用してもよい。図面において示される具体例において、螺合突起149の下流端のボス2079(図12)の内径は、バッフルホルダー2005の内径2031とほぼ同等である。
当業者は、ノズルシステム101を通る流れが、流体が流れなければならない小断面積が、流れに低レイノルズ数を生じるため、バッフル2001にもかかわらず層流のままであることを認識するであろう。図11に示されるように、バッフルは、ノズル137の中心縦軸2017から離れて、ノズル137の内面233に向かって、コア流189およびシース流191を偏向する。１つの具体例において、コア流189が、第１の259および第２の261ねじりゾーンの間の移行の間を通る時、コア流189もノズル137の内面233の非常に近くを流れる。しかしながら、シース流体の流れ191の一部2081は、コア流189中の粒子は、ノズル137の内面233に実際に影響を与えたり、または接触しないように、コア流189およびノズル137の内面233の間に残る。ノズル137のさらに下流で、流体力は、ノズル137の中心に向かって(例えば、ノズル137の縦軸2017と並んで)、コア流189を押し戻す。
図18A-18Eを参照して、バッフル2001は、ノズル137において、断面流量範囲の形状を変化させ、サイズを減少させる。(明確性のため、図18A-18Eは、バッフルから下流のいずれのノズル構造も示さない。図18A-18Eの各々における流量範囲は、明確性のため太字である)。バッフル2001(図18A)から上流で、断面流量範囲2087は、円形または楕円形である。バッフル2001の上流末端にて、流量範囲は、他の形状も適当であり得るが、バッフルプレート2003(図18B)のレッグ2007、2009の交差2015にて、円形状から略半円形状2089へと変化し始める。そこでは、断面流量範囲2089は、バッフルから上流の流量範囲2087より小さい。図18Cは、バッフルホルダー2005の一部から流体の流れとして流量範囲2091を示し、図18Dは、バッフルプレート2003の下流レッグ2009の下流端2041にて、さらに下流の流量範囲2093を示す。バッフルプレート2003の下流レッグ2009の角度方向のため、流量範囲2093は流量範囲2091よりいくらか大きいと観察されるであろう。バッフルプレート2003(図18E)から下流で、バッフルを通る流量範囲2094は、示された具体例において円形であるバッフルホルダー2005の内面2051の形状に対応する。(他の形状も適当であり得る)。バッフルホルダー2005から下流で、ノズル137のねじりゾーン259、261は、望ましくは、上記のようにねじり力を供する。
図11に示されるように、１以上の気泡2095は、L字型プレート2003の下流レッグ2009およびバッフルホルダー2005の間の容量2053中に捕獲され得ることが観察されている。さらに、気泡2095の一部は、下流レッグ2009のエッジ2041およびバッフルホルダー2005の間のギャップ2049を通って延びてもよい。従って、（複数の）気泡2095は、恐らくノズル137を通って流体の流れに影響を及ぼしながら、L字型プレート2003の下流レッグ2009の下流の断面流量範囲の一部を占有してもよい。例示的なバッフル2001は、（複数の）気泡2095あるなしで、上手く作用することが分かっている。従って、バッフルを使用して、本発明の範囲から逸脱せずに、いずれの気泡の関与もなくして、精子細胞を配向することができる。
2097と示されるもう１つの例示的な配向バッフルは、図19および20に示される。バッフル2097は、上記の配向ノズル137における平らで略半円形バッフルプレート2099を含む。バッフルプレート2099は、試料導入導管157の下流のノズル137に位置し、ノズル137の縦軸2017に略垂直である。バッフルプレート2099は、バッフルプレート2099の曲面エッジ2101およびノズル137の内面233の間に大きなギャップがないように、ノズル137の内面233の曲率に大体マッチする曲面エッジ2101を有する。また、試料導入導管157の外径2109と大体並ぶように、バッフルプレート2099は、ノズル137の縦軸2017を通って短距離延びる真っ直ぐなエッジ2103を有する。バッフルプレート2099は、前記L-字型バッフル2001に関連して記載されたO-リングシール2071と同様なO-リングシール2105と、ノズル137の内部に形成された環状ショルダーまたはシェルフ2107との間のバッフルプレート2099の圧縮に由来する摩擦によって所定の位置に保持される。図19に示されるように、配向バッフル2099は、分析される粒子を含有するコア流189が、その流路の一部に沿って、ノズル137の中心縦軸2017からズレるように、流体の流れを偏向することによって作用する。例えば、コア流189は、第１のねじりゾーン259、ならびに第２のねじりゾーン261の少なくとも一部を通って流れるように、ノズル137の縦軸2017からズレている流路に沿って向けることができる。結果的に、粒子(例えば、精子細胞)は、ノズル137の中心縦軸2017からズレている位置にあり、ねじりゾーン259、261によって生じたねじり力に付される。
当業者は、本発明の範囲から逸脱することなしに、実質的な変形が上記の例示的バッフル2001、2097に行われ得ることを認識するであろう。必要なのは、バッフルが、ノズルの内面に向かって、コア流189およびシース流191を偏向するように、またはコア189およびシース流191が、サイズおよび／または形状が変化する断面積を通って流れるように操作されることのみである。さらに、配向バッフル構造は、本発明の範囲から逸脱せずに、ノズルと統合的に形成されるか、あるいはノズルおよびフローボディーと統合的に形成され得ると理解される。
オフセット試料導入導管
コア流189は、ノズル137の中心のその従来の位置からズレた位置へと試料導入導管157を配置し直すことによって、ノズル137の中心縦軸2017からズレた流路に沿って方向付けられてもよい。例えば、図21は、ズレた試料導入導管157を有する例示的なズレた試料導入ノズルシステム2151を示す。特記しない限り、ノズルシステム2151は、図4および5に示されるように、ノズルシステム101と実質的に同一である。有意な差は、ノズルの縦軸2017と並ばないように、試料導入導管157がノズル137の中心から動かされていることである。従って、コア流189は、縦軸2017からズレた流路に沿って、配向ノズル137のねじりゾーン259、261へと向けられる。図21に示される例示的なノズルシステム2151は、上記の例示的な配向ノズル137を使用するが、ズレた試料導入導管157を、異なる配向ノズルまたは非配向ノズルと使用して、コア流189において粒子を向けることができると考えられる。
ノズル取り付けおよび調整
フローボディー133およびノズル137は、331と示されたノズル取付具の手段によって選択された向きおよび位置に取り付けられる。１つの具体例(図22)において、取付具331は、各R、XおよびY軸339、341に沿ってフローボディー133およびノズル137の直線状調整を供する第１および第２直線ステージ333、337、およびフローボディー133およびノズル137の縦軸2017に対応するZ軸３４５の回りの回転調整を供する第３の回転ステージ343を含めた複数のステージを含む。これらのステージ333、337、343は、例えばNewport Corporation of Irvine CAから商業的に入手可能な、慣用的設計の適当なステージであってもよい。特に、第１の直線運動ステージ333は、フレーム349上に取り付けられた固定された第１のステージ部材(図示せず)、X軸339に沿って固定された第１のステージ部材上で滑らすことができる可動性の第１のステージ部材355、および選択されたX-軸位置に、可動性の第１のステージ355部材を正確に動かすための例えば、マイクロメーターといったアクチュエータ357を含む。第２の直線運動ステージ337は、可動性の第１のステージ部材355上に取り付けられた固定された第２のステージ部材359、Y軸341に沿って固定された第２のステージ部材359上で滑らすことができる可動性の第２のステージ部材361、および選択されたY-軸位置へ可動性の第２のステージ部材361を正確に動かすための例えば、マイクロメーターといったアクチュエータ363を含む。回転（第３の）ステージ343は、可動性の第２のステージ部材316、Z-軸345に対する回転のために、固定された第３のステージ部材365上に回転可能に取り付けられた可動性の第３のステージ部材371、およびZ-軸345に対する選択された角度位置に可動性の第３のステージ部材371を正確に回転するための例えば、マイクロメーターといったアクチュエータ373を含む。これらのステージ333、337 343によって供される三軸調整によって、ノズルオリフィス103を出て行くノズル137および流体の流れ21が、光学システム109に対して正確に置かれることが可能になる。Z-軸345に対するノズル137の回転は、図23に図式的に示されるように、ノズル137を出て行く流れ21が、ノズル137によって配向された細胞(例えば、精子細胞)を、光学システム109からの光ビーム25が細胞の所望の表面(例えば、精子ヘッド205の平坦な面207)上に落ちるであろう位置に持ってくるように、回転させることを可能にするため、特に有用である。他のノズル取付具が適当であり得る。例えば、4-軸ノズル取り付けシステムも使用し、X、YおよびZ軸に沿って直線調整およびZ軸に沿って回転調整を提供することができる。さらに、サーボまたはステッパーモーター制御されたマイクロトランスレーションステージ(例えば、Auburn, MichiganのPolytech PI, Inc.からの成分番号M-110.2DG)のような、自動並列特徴を有する１以上のステージを使用することが望ましいかもしれない。
図36において模式的に示された１つの具体例において、例えば、ノズル137は、分析される細胞を含有する流れ21を略上向き方向に向けるように向けられる。流体の流れ21の方向および水平方向の間の角度377は、好ましくは5ないし85度の範囲、より好ましくは15ないし75度の範囲、さらにより好ましくは約30ないし65度、なおさらに好ましくは約45ないし60度、最も好ましくは約50ないし55度である。この配向は、ノズルシステム101中に閉じ込められたいずれの空気もすぐに除去される点で有利である。また、流体の流れ21の速度は、液滴33の収集前に重力下で、徐々に減少する。液滴33のより緩やかな減速は、精子細胞の場合、収集後に仕分けられた精子のより高い運動性を招くことができる分析される細胞に対してよりストレスが少ないと考えられる。もちろん、本発明の他の具体例において、ノズル101は、ジェットインエアーサイトメーターに対して慣用的であるように、オリフィス103を出て行く時、流体の流れ21が実質的に下向きの速度を有するように置かれる。
所望により、フローボディー133およびノズル137のようなノズルシステム101の要素は、非反射性、非発光性材料(例えば、UV光線に付された時、光を発光しないくすんだ暗いペイントまたはエポキシ)で覆われて、シグナルノイズを引き起こすかもしれない、または光学システム109に対して他の有害な影響を有し得るこれらの要素133、137からのいずれかの反射されたおよび／または発光された光を減少する。
変換器および液滴形成
流体の流れ21にエネルギーを導入するための変換器105は、１つの具体例において、ノズルシステム101（図3〜5）のフローボディー133の回りに固定された焦電エレメント（図示せず）を含むカラー379を含む。変換器は、Beckman Coulter, Inc.から成分番号6858368として入手可能な慣用的設計である。ノズル137から距離dだけ下流にある液滴破壊位置107においてそれを破壊して液滴33とする周波数にて、エネルギーが流体の流れ21に送達できるように、変換器は音響エネルギーの適当な源への連結用のターミナル383を有する。フローサイトメトリーの当業者によって理解されるように、液滴形成の特徴は、次の方程式1によって支配される:
Figure 0004614947
 ［式中、Vは、流れ21の速度であり;fは、ノズル137を通って流体の流れ21に適用される周波数であり;そしてλは「波長」または液滴33の間の距離である］。液滴33が、流れ21の直径の4.54倍である液滴33の間の距離で、通常のパターンで形成されることは、フローサイトメトリーの既知の原理である。ノズル137に近い流れ21の直径Dは、その下流末端で、ノズルオリフィス103の直径に大体対応するため、流れ21(およびノズル137)が振動して液滴33を形成しなければならない流れでの頻度は、次の方程式2を用いて、容易に計算することができる:
Figure 0004614947
 変換器105を操作して、30,000-100,000液滴33／秒の範囲で発生できる。例えば、変換器105は、50,000-55,000液滴／秒を発生し得る。頻度が55,000サイクル／秒(55 kHz)であると仮定し、さらに流れ21における細胞の濃度は、細胞が55,000細胞／秒の実質的にマッチする速度でノズル137を出て行くと仮定すると、平均で、１つの細胞／液滴33となるであろう。(実際には、いくつかの液滴33は全く細胞を含有せず、いくつかは１つの細胞を含有し、いくつかは１以上の細胞を含有するであろう)。もちろん、周波数(f)、流れ21(オリフィス103)サイズ(D)および流れ21速度(V)の変更を含めた様々な要因のいずれかを変更して、この平均を変動させることができる。理想的には、これらの要因は、特に運動性の保存が重要である精子細胞の場合において、プロセスの経路の間、細胞に与えられるストレスの量を減らすようなものであるべきである。
破壊センサー
図2を参照して、破壊センサー389を使用して、流れ21が遊離液滴33を形成し始める位置(例えば、破壊位置107)を決定することができる。破壊位置107は、流れ21粘度、流体の表面張力および変換器105の振動の幅を含めたいくつかの要因によって変動するであろう。破壊位置107をモニタリングすることによって、変換器105の振幅を変動させて、破壊位置107を所与の範囲内に維持し、各液滴33が破壊する時が、マイクロプロセッサー131によってより正確に予測できるようにする。これによって、流れ21の変化を選択的に制御することによって達成される液滴33の電荷をマイクロプロセッサー131が正確に制御することが可能になる。液滴33の電荷は、液滴33形成の直前の流れ21の電荷と同じであるため、マイクロプロセッサー131は、下記のように、流れ21を選択的に荷電することによって、液滴33の仕分けを制御する。
一般的に、破壊センサーは、破壊位置にて液滴へと壊れる流体のいずれかの連続した流れと共に使用するためのものである。(図2の具体例において、破壊センサー389は、ノズル137および問い合わせ位置115から下流に位置する)。１つの例示的な破壊センサー389は、図25に図式的に示される。光源393は、流れ21の一側面に位置して、破壊位置107が維持されるであろう所与の範囲内に流れ21を照らす。流れ21の他の側面上に位置した線状フォトアレイ395は適合されて、流れ21に実質的に平行な軸に沿って配向される。結果として、フォトアレイ395は、液滴33を通過する光源393からの光を検出し、検出された光に対応するアウトプットシグナルを供する。
アウトプットシグナルを処理して、破壊位置107の位置を決定する。例えば、アウトプットシグナルはデジタル化され、処理のためにプロセッサー131に供される。別法として、図25に示されるように、光源393は、LEDまたは可視スペクトルの近赤外部分を生じる他の源であってもよい。液滴33間の光通過は、レンズ401によって拡大され、フォトダイオード395の1線状アレイによって8に向けられる。各フォトダイオードは、作用する光強度に比例する電流を発生する。この電流は、8つの電流電圧オペアンプ回路405へ送られる。オペアンプからのアウトプット電圧は、8トラック/ホールド増幅器407にACカップリングされる。増幅器によって使用されるトラック/ホールドシグナル409は、変換器105から採取される。トラック/ホールド増幅器からのアウトプットは、マイクロプロセッサーユニット(MPU)391のA/D変換器411に送られる。MPU391によって計算されたデジタル値は、システム制御マイクロプロセッサー131に供されるであろう。参照テーブルおよび／またはアルゴリズムは、システム制御マイクロプロセッサー131によって使用されて、破壊位置107ドリフトおよび変換器105に対する電圧調整の間を変換する。別法として、MPU391からのアウトプットは、変換器105の振動の振幅の変化に対応する振幅を有するDC電圧のようなアナログシグナルであってもよい。dc電圧は、液滴変換器105を駆動する高電圧増幅器インプットに適用されて、振動の振幅を変化させることができる。従って、そのようなプロセッサー391は、フォトアレイ395からアウトプットシグナルを受け取り、破壊位置107の位置に対応する位置シグナルを供するための制御を構成する。そのようなプロセッサー391は、また、液滴33の破壊位置107の位置の指標であるアウトプットシグナルを受け取り、位置107の位置の関数として変換器105の作用を変化させるための制御を構成する。
別法として、当業者によく知られるように、ビデオカメラおよびストロボを使用して、液滴破壊位置をモニターし制御することができる。従って、図26-27で示されるように、ビデオカメラシステム412およびストロボ413を、破壊位置107をモニターするために供してもよい。ストロボ413をマスク414A(例えば、小さなスリット形状の開口414Bを備えたカバー)の後ろに置いて、光学システム109に入るストロボ413によって生成される光の量を制限するのが望ましい(図27)。
落射照明光学システム
光学システム109は、分析される細胞がスポットを通過するように、ビームスポットとして、流体の流れ21に電磁放射線25(例えば、レーザービーム)のビームをフォーカスするために調整される。他の波長を使用してもよいが、例えば約350-700nmの波長を有するスペクトルの可視または紫外線部分のレーザー光であってもよい。レーザー光の波長は、粒子を分析するのに使用される特定の蛍光色素を励起することが可能であるように選択することができる。もし光学システム109を使用して、例えばHoechst 33342で染色された精子細胞を分析するならば、波長は、約350-370nmの範囲であるように選択され得る。レーザーの電力アウトプットは、50および300mWの間を変動し得る。例えば、精子細胞は、200mWレーザーを用いて分析され得る。図28-34を参照して、システム109は、縦光学軸419を有する417と示された器具を含む落射照明システム415である。本明細書中で使用されるように、用語「落射照明」は、ビームスポットを通過する細胞からの蛍光発光の少なくともいくつかが、フォーカスされたビーム25と同じ軸に沿ってだが、反対方向に、光学器具を通って向けられる光学システムを意味する。システムのこのタイプは、前蛍光および側蛍光を検出し、２つ以上の光検出器を使用する慣用的なシステムと違って、唯１つの光検出器117を含めた、一組の光学のみが必要であるという点で有利である。しかしながら、落射照明システムが好ましいが、本発明の多くの態様が、使用される光学システムのタイプに拘わらず適用できることが理解されるであろう。
１つの具体例において、落射照明器具417は、複数の光学要素を支持する長方形のベース429を含む。これらの光学要素は、関連した寸法、焦点距離、およびパーツ数の具体的な例と共に下記される。当業者によって理解されるように、この情報は例示的なものであるだけであって、代替の光学要素を、本発明の範囲から逸脱することなしに使用することができる。
図28-34を参照して、光学要素は、レーザーまたはアークランプ435からの光の平行ビーム25を、例えば、ベース429から延びるダイクロイックチャンバー443の側壁441の開口439に取り付けられた調節レンズアセンブリ437を通って反射する反射フィルター431を含む。この特定の具体例において、調節レンズアセンブリ437は、止め輪445、減光フィルター447、円柱レンズ449、レンズホルダー455および薄ナット457を含む。円柱レンズ449は、ビーム225に一次元発散を導入し、好ましくは略楕円形である所望の断面形状459を有するようにビームを形付ける光学要素（下記される）に向かわせる。一例として、円筒型レンズ449は、16mmの焦点距離を有する平凸レンズであってもよい。ビーム拡大器(図示せず)は、所望により、器具417にインストールされて、楕円形ビームスポット459の形状に調整を加えることを可能にする。
反射フィルター431は、ビーム25がd器具417の光学に向けてフィルター431を反射することが可能なように、開口467を有するフォルターホルダー463の角張った面465上のクリップ461によって取り付けられる。ホルダー463は、ベース429およびダイクロイックチャンバー443に固定されたアウトリガ473に対するX-軸471に沿って動かすことが可能な線状ステージ469、適切な位置で、器具417にビーム25を反射するように、ホルダー463および反射フィルター431を正確に置くための適当な手段475(例えば、マイクロメーター)によって動かすことが可能なステージ469に固定される。ダイクロイックフィルター477は、チャンバー443に取り付けられたフレーム485上のクリップ479によって保持され、この特定の具体例において器具の縦の光学軸419に対応する軸489に沿って順方向487に形作られたビーム25を反射するように機能する。ビーム25は、流れ21の流れ227の方向に略垂直に延びる楕円の長軸を有する前記の略楕円形状459(図6)を持つビームスポットとして、流体の流れ21上のビーム25をフォーカスするフォーカスレンズアセンブリ491を通過する。各細胞がビームスポット459を通過する時、細胞中の蛍光染料(または他のレポーティング剤)は活性化されて、蛍光31(図23)を発光する。DNA選択的蛍光染料で染色された精子細胞の場合、記載されるように、X細胞はY細胞より多くのDNAを有し、より多くの蛍光染料を含み、細胞を識別し仕分けるための基準を供するY細胞(例えば、3.8%)より強いシグナルを発光する。１つの具体例において、フォーカスレンズアセンブリ491は、ダイクロイックチャンバー443の前壁505の開口503に取り付けられた顕微鏡アダプター501、フォーカスバレル507、一対のレンズ取り付けバレル509、およびレンズ511それ自体、成分番号41209としてOriel Corporationから入手可能な16mmの焦点距離を有する直径12.5mmの平凸レンズを含み、ならびに340-550nmの範囲の波長を有する光に対して反射防止的に覆われる。レンズ511は、石英ガラスであってもよい。また、無限−修正蛍光顕微鏡対物レンズのような他のフォーカスレンズも適当であり得る。フォーカスレンズアセンブリ491は、流れ21のコア189に楕円形状のビームスポット459をフォーカスするために、慣用的なテレスコーピングフォーカス調整515を有する。
ビームスポット459を通過する時に細胞によって発光される出て行く蛍光31は、入射レーザー光25とは異なる（ストークスシフトの法則のためより長い）。蛍光発光31のいくつかは、蛍光発光31を収集し平行にするフォーカスレンズ511を通る入射ビーム軸に沿って、逆方向513に伝達される。平行蛍光発光517は、レンズ511から、蛍光発光517を伝達するダイクロイックフィルター477に、逆方向に通過する。一例としては、ダイクロイックフィルター477は、成分番号XF2001, 400DCLPとして、Omega Opticalから入手可能なフィルターであってもよい。
光学システム415は、器具417の光学軸419に沿って、ダイクロイックフィルター477の後ろに置かれたフィルターシステム519を含む。１つの具体例において、フィルタリングシステム519は、ダイクロイックチャンバー443の後壁527の開口525に取り付けられたホルダー523中の発光フィルター521を含む。発光フィルター521は、ダイクロイックフィルター477を通って伝達されるいずれかのレーザー光散乱または他の所望の電磁放射線を弱める。一例としてであって、制限としてではなく、発光フィルター521は、成分番号XF3097として、Omega Opticalから入手可能であるように、408nmより大きい波長を有する光の90%以上を伝達するように適合された薄膜のロングパスフィルターであってもよい。整列薄膜アセンブリ529は、光学軸419に沿って、発光フィルターから後ろに間隔を設けられる。このアセンブリは、装置417の縦光学軸419に平行なべース429の縦方向に延びるレール533上で動かすことが可能なスライダー531、スライダー531に固定されたフィルターホルダー535、薄膜フィルター要素539、および器具417の光学軸419に対する角度543にて、薄膜フィルター要素539をフィルターホルダー535に固定するためのクリップ541を含む。薄膜フィルター要素539は、ダイクロイックフィルター477と同じ厚みを有し、器具417の光学軸419上に平行蛍光発光517を翻訳し直すように機能する。レール533の反対側上のベース429の平行スロット547を通って延びるファスナー545は、光学軸419に沿った所望の位置のベース429にスライダー531を固定する。整列薄膜アセンブリ529の後方に間隔を設けて、レール533上を摺動可能であって、適当なファスナー557によって選択位置に固定されたフレーム533に設置されたホルダーによって保持された非球面レンズ549がある。非球面レンズ549は、コリメートされた蛍光発光517を、一般に559で示される空間フィルターにフォーカスし、そのフィルターは分析すべき細胞以外の源からの反射または発光を濾過する。非球面レンズ549は、Oriel Corporationから入手可能なように、15mmの焦点距離を有する、例えば、直径が12.5mmの非球面レンズであってもよい。レンズ549は、好ましくは、可視の発光波長に対して反射防止被覆されるが、レーザー光散乱の伝達をさらに弱める材料(例えば、フリントガラス)でできている。
図34に示されるように、空間フィルター559は、１つの具体例において、装置417のベース429に取り付けられたフレーム563によって取り外し可能に保持された一対の開口プレート561を含む。プレート561の各々は、その中にスリット567、571を有し、１つのスリット567は、好ましくは略垂直で、他方の571は、好ましくは略水平で、配置は、スリット567、571が開口573を形成するように交差するようなものである。１つの具体例において、開口573は、形状が略長方形であり、100ミクロンの垂直寸法575および500ミクロンの水平寸法577を有する。開口573のサイズおよび形状は、収集容量579以外のいずれかの源から反射および光を除去するように機能する限り、変動し得る（または開口プレートを変更することによって調整さえされ得る）。開口プレート561を保持するフレーム563は、好ましくは、２つのパーツ、すなわち、ベース429のレール533上を摺動可能であって、ファスナー587によって選択位置に固定されたプレートホルダー583、および開口プレートをプレートホルダー583上の所定の位置に固定するバッキングメンバーを有する。
１つの具体例において、空間フィルター559における開口573のより小さい（垂直）寸法575は、細胞を評価するための「スリットスキャニング」技術の使用を可能にするような大きさにされる（あるいは調整される）。この技術は、本明細書の「フォーカスされたビームスポット」セクションにより詳細に記載される。
450と示される落射照明光学システムのもう１つの具体例は、図35に示される。この具体例は、記される以外は、図28-34に示される具体例と実質的に同じである。１つの有意な差は、ダイクロイックフィルター477が、照明ビーム25を（反射というよりむしろ）伝達し、蛍光発光31を（伝達というよりむしろ）反射する異なるダイクロイックフィルター451によって置き換えられるということである。また、蛍光発光31は、ダイクロイックフィルター451によって、伝達されるというよりむしろ反射されるため、落射照明光学システム450のこの具体例において、整列薄膜539に対する必要性はない。従って、落射照明システム450は、本発明の範囲から逸脱することなしに、所望により光学システムを再構築する一例に過ぎない。
さらに、円柱レンズ449は、調整可能な取付アセンブリ449A上に取り付けられる。取付アセンブリ449Aによって、照射ビーム25に対して垂直な面において円柱レンズ449の２軸転写移動が起こる。解除可能な留め具(例えば、ネジ(図示せず)）は、細長い形状の穴449B（そのうちの１つのみが図35上で見える）を通って延びる。留め具の解除によって、ビーム25に垂直な第１の方向におけるレンズ449の移動が可能になる。同様の留め具(図示せず)は、細長い形状の穴449Cを通って延び、第１の方向に垂直な第２の方向におけるレンズ449の移動を可能にする。これによって、ビーム25およびレンズ449の交差がレンズ449の表面にを動くことができ、それにより円柱レンズ449によって供されるフォーカシングに僅かな変化を起こすように、円柱レンズ449およびビーム25の相対的位置を僅かに調整することが可能になる。一旦、レンズ449が所望の位置にあれば、ファスナーをそこにそれを維持するように堅く締めることができる。
光検出器
空間フィルター559を通過する発光された蛍光は、落射装備417の後方のベース429のレール533上を摺動可能であってファスナー595によって固定位置に締め付け可能な設置プレート591に装着された光検出器117に落ちる。光検出器117は、以後、より詳細に記載されるように、蛍光発光31を検出し、それらを、細胞の所望の特徴を分析するために処理することができる電子シグナルへと変換する。光検出器117は、Hammamtsuから入手可能な光検出器のような従来のデバイスであってもよい。光検出器117は、好ましくは、分析される特定の染色された細胞に対して落射照明システムによって生成される発光強度に最適な前置増幅器およびPMTゲインを含む。
一般的には、PMTゲインは、約200および2000の間のボルトが真空管に適用された時に、最適化される。例えば、Hoechst 33342から蛍光発光を検出する場合、PMTゲインは、約400-800の間のボルトが真空管に適用された時に最適化される。１つの特に望ましい光検出器は、185-830nm(530nmピーク)のスペクトル域、0.01mA最大平均陽極電流、典型的に、70mA/Wの陰極放射感度、140μA/lmの陰極光感度、300A/lmの陽極光感度、1nA(典型的に0.1nA)の最大陽極暗電流、および1.4ナノ秒立ち上がり時間を有するPMTを含む。PMTは、>37MHzに対して平坦なゲインを示し、50Ω負荷への1Vピークアウトプットを有し、および400+1秒未満の回復時間を有するDCカップルド増幅器である。また、シグナル-対-ノイズ率を800dB未満まで減少することなしに、増幅器がPMT能率差異の補正のために高圧調整できることが望ましい。
ビーム入射の角度
図36は、図式的に、光ビームおよび流体の流れの交差の１つの望ましい配向を示す。いくつかのポイントは注目するべきである。示されるように、光ビーム25は、前記したように、細胞が依然として実質的に所望の向きにありつつスポット459を通過するように、ノズル137の出口オリフィス103から短い距離に過ぎない。好ましくは、1.0未満の位置115にある、あるいはノズル137の内側でさえ、流れ21に焦点を結ぶ。これは、精子細胞を含めた、流体の流れ21において移動性の細胞に対して、特に重要である。
注目すべきもう１つの点は、この具体例のビーム25が、流れ21の側から見て（図36）、流体流21の縦軸に対して斜め（90はずれる）である入射Aの角度にて流体流21と交差するビーム軸609に沿って流体流21に向けられることである。特定の粒子を仕分ける時、異なるタイプの粒子のより良い識別は、0°以外の入射の角度にて、流れ21を照射することによって得ることができる。例えば、精子核は、望ましくは、5ないし45度の範囲、より好ましくは15ないし30度の範囲、さらにより好ましくは18ないし24度の範囲にある入射の角度Aにて照射される。他の粒子(例えば、生精子細胞)は、光ビーム25が流体の流れ21に対して略垂直である時(つまり、角度Aが約0°である時)、問い合わせるのがより容易である。従って、角度Aは、本発明の範囲から逸脱することなしに、いずれの角度であってもよい。
角度Aの適切な選択によって、特定の粒子の改善されたシグナル対ノイズ識別、したがってそれらの粒子(例えば、XおよびY染色体精子細胞を有する精子核)の異なる特徴に基づくより正確な識別が得られる。この改善は、フォーカスレンズ511に入るレーザー光散乱の減少を含めた多くの要因によるものであろう。フォーカスされたビームスポット459は、好ましくは、流れ21より幅があるため、回折パターンはビーム25および流れ21の交差115で作られる。角度Aが約12度より大きい時、反射された回折パターンは、レンズ511上に落ちない。もう１つの要因は、ノズルボディー139がレンズ511と干渉しないように、湾曲された角度Aによって、ビーム25がノズルオリフィス103に非常に近くでフォーカスされるのを可能になるということであり得る。関連して、ノズル137により近いビームスポット459をフォーカスすることで、改善されたシグナルが得られるように、細胞はノズル137により近く、より均一に並べられる。さらに、湾曲された角度Aでレンズ511(ビーム25)に提示される細胞のより「正面からの」プロファイルは、細胞の何らかの不均衡によって生じる総蛍光強度の変動を減らす。このように、精子細胞の場合、上記の論議のように、ビーム25が各精子細胞201の広い面207のうちの１つに落ち、ノズル101および光学システム109がこの結果を達成するように置かれることが好ましい。
入射の湾曲された角度Aは、いくつかの粒子を仕分けるのに有益であると考えられるが、ビーム軸および流れの間の交差の角度は、90度または本発明の範囲から逸脱せずに、いずれかの湾曲された角度であってもよいと考えられる。また、入射の最適な角度は、分析される特定の粒子の特性によって、大きく変動し得ることが予測される。
フォーカスされたビームスポット
図6を参照して、１つの具体例のフォーカスされたビームスポットは、流体流の流動227の方向に略平行に延びる短軸に沿って、流体流の流動227および幅W1の方向に、略直角に延びる長軸に沿った長さL1を持つ略楕円(長円)形状459を有するように示される。１つの具体例において、幅W1は、精子細胞219のヘッドの長さ未満であり、さらにより好ましくは、ウシ精子細胞201の場合、約1μm未満の長さを有する細胞の染色体DNAマスを含有する領域225の長さ未満である。直径約60μmであるシース流191を有する流れ21およびウシ精子細胞201を含有するコア流189に対して、例示的な長さL1は約80μmであり、例示的な幅W1は約1.5μmである。ビームスポット459を、精子細胞201のヘッド205の長さ、またはいずれかの他の細胞または分析される粒子より短い、およびさらにより好ましくは、精子細胞201のヘッド205のDNA領域225の直径より短い幅W1にフォーカスすることによって、「スリットスキャニング」技術に精通している者によって理解されるように、より大きいシグナル解像度が達成される。これは、以降論議されるように、細胞が細いビームを通って動く時に、細胞からのフォトン発光31が細胞の長さにわたり測定されるように、ビーム25が細胞の長さより短い幅(つまり、流れ流の方向にある細胞の寸法)を有するように細くされる技術である。このように、細胞の長さと共に、DNA材料を含む構造における変動に関する情報を得ることができる。また、スリットスキャニング技術は、「一致」細胞、つまり、重複しているまたは非常に近い細胞を同定するのに役立つ。
前述のように、スリットスキャニングは、空間フィルター559の開口573が、流れの流動の方向における細胞長の画分に対応する、細胞から発せられた光の一部のみが光検出器117への開口を通過するような垂直寸法575を有するようなサイズとすることによっても行うことができる。さらに、シグナル解像度は、ビームの幅および／または空間フィルターの開口のサイズを調整することによって最適化されて、一緒に作用して、スリットスキャニングに適した形状にされたビームスポットを供することができる。
ビームスポット459の形状の調整する１つの方法は、異なる円柱レンズに変更することによって、および／または光学システム109のビームエキスパンダーに調整をすることによる。楕円形に形作られたビームスポット459を形成するためのビーム25を形作るさらなるいずれかの方法は、本発明の範囲内であると考えられる。また、他の形状およびサイズのビームスポットが使用されてもよく、本発明の範囲内であると考えられる。
仕分けシステム
図2は、仕分けシステム119の例示的具体例を示す。仕分けシステム119は、液滴33(例えば、精子細胞のX/Y染色体含有量)中に含有される粒子の分類によって、液滴33を荷電および／または荷電しないための帯電デバイス627、およびそれらの電荷に従い、液滴33を異なる群123、125に仕分けるための一対の帯電された偏向板629を含む。偏向板629を、鈍い、低発光性コーティング(例えば、エポキシまたはペイント)で覆って、偏向板629によって反射されるまたは発光される光を制限するのが望ましい。偏向板629は、いずれかの適当な電源635によって荷電されてもよい。２つの完全に帯電した偏向板629の間の電位は、2000ないし4000ボルトの範囲であることが一般的に望ましい。しかしながら、偏向板629の間の電位は、約1000および6000ボルトの間のいずれかであってもよい。
荷電デバイス627は、流れ21が液滴破壊位置107近く(例えば、５液滴長またはより近く)の位置を通る開口633を有する荷電要素631を含む。液滴破壊位置107に関して、荷電要素631の位置の調整を容易にするメカニズムを有する荷電要素631を取り付けることが望ましい。図26および27に示されるように、例えば、荷電要素631および偏向板629は、ノズルシステム101に関して、３-軸翻訳および荷電要素631および偏向板629の偏向調整を可能にする調整可能な取り付けアセンブリ5001に取り付けられてもよい。流れ21に平行な軸5011に沿った翻訳のために、取り付けアセンブリ5001は、ボード5003におけるスロット5009を通る解除可能なファスナー5007によって、バッキング5005に固定されるボード5003を含み、ここにスロット5009は、軸5011に略平行に向けられる。流れ21に垂直な軸5013における翻訳のために、第２の調整ボード5015は、第２の調整ボード5015におけるスロット5019を通過する解除可能なファスナー5017によって、第１のボード5003に固定され、ここにスロット5019は、軸5013に略平行に向けられる。荷電要素631および偏向板629は、第２の調整ボード5015に固定される。従って、ファスナー5007および／または5017を解除することによって、流体の流れ21に平行な面において、ノズルシステム101に対する荷電要素631および偏向板の位置を調整し、次いでファスナー5007および／または5017を堅く締めて、取り付けアセンブリ5001を固定することができる。
第１の２つの軸5011、5013に垂直な３つの軸に沿った翻訳のために、下地5005は、調整可能なファスナー5023(例えば、固定支点5021のタップされた穴に留められた螺合ボルト)によって、固定支点5021に固定される。１つの具体例において、各調整可能なファスナー5023は、バッキング 5005および固定支点5021の間に置かれたスプリング5025を通過する。いずれのスプリング5025の圧縮の量も、それぞれのファスナー5023を締めるまたは緩めることによって調整可能である。全てのスプリング5025の圧縮を同量で調整することで、第３の軸に沿った翻訳が生じる。取り付けアセンブリ5001は、１以上の他のスプリング5025に関して、１以上のスプリング5025の相対的圧縮を変化させることによって、実質的にいずれの方向にも傾けることができる。
この例示的な具体例において、荷電要素631および偏向板629の相対的位置は、それらは全て、同じ調整ボード5015に固定されるため、相互に関して固定されたままである。これによって、取り付けアセンブリ5001の調整が、偏向板629に関して、荷電要素631の並列に影響を及ぼすのを防ぐ。
荷電要素631は、プロセッサー131の制御下で、適当な電気回路(例えば、90ボルト選択的荷電回路)に接続され、荷電要素631に電荷を適用するための電力供給に連関される。回路を使用して、液滴33が、所望の特徴(例えば、少なくとも１つの生X-染色体精子細胞)を有する粒子を含有するかによって、破壊位置107の液滴33の形成の直前に、流れ21を荷電するかあるいは荷電しない。荷電要素631は、流れ21の静電両極性に関して、電気的参照を供するために、流れ21の近くまたは流れ21から形成された液滴33の近くに、静電的に置かれる。液滴33は、液滴33が流れ21から離れた時点で、流れ21と同じ電荷を持つ。次いで、荷電されたあるいは荷電されていない液滴33は、偏向板629の間を通り、収集システム2201の収集容器2207へと電荷によって仕分けられる。仕分けが図2における２つの群または液滴123、125の集団を生成する間、粒子は、それぞれの群の液滴33に異なる電荷を置くことによって仕分けられた1からNまでのいずれかの数の集団へと、各々が液滴の異なる集団を収集するように置かれる適切な数の収集容器を供給することによって分離されてもよい。
自動液滴遅延平衡
上記の仕分けシステム119において、プロセッサー131は、粒子が破壊位置107において最後の付着液滴33である場合に、その粒子を含む液滴に適用されるべき電荷（または電荷の欠如）が適用されるように、問い合わせ位置115から液滴破壊位置107まで粒子が移動するのに要する時間を見積もらなければならない。もしプロセッサー131によって使用される遅延設定が間違っていれば、液滴33は、その内容によって仕分けられないだろう。同様に、もし液滴33への電荷の適用が、液滴33形成と僅かでも位相がズレれば、液滴33はどれも完全に荷電されず、中性電荷を有するはずである液滴33は小さな陽性または陰性電荷を持つため、これは仕分けを低下させ得る。これは、偏向プレート629の間の電界を通って、液滴33の経路を改変するだろう。
プロセッサー131が、適切な遅延設定を使用していることを確証するまたは液滴遅延設定を調整する(つまり、システムの9液滴遅延設定を較正する)最良の方法は、多くの液滴33を仕分け、結果を検査することである。増加的に遅延設定を変動し、結果をモニタリングすることによって、最適な遅延設定を選択することができる。慣用的には、この仕分け較正は手動で行われる。最近では、自動化較正システムが設計されて、仕分けられた液滴中の液滴の含有量をサンプリングまたは検査し、ヒトの介入なしで、自動的に遅延設定を調整している。例えば、引用によって本明細書中に援用される米国特許第6,372,506号(Norton)および同第5,643,796号(van den Engh)は、両方とも、自動化仕分け較正システムを開示する。これらのシステムのいわゆる利点は、それらがより労働集約的でなく、初期設定の間だけでなく、仕分けプロセスを通して、遅延設定を確証することが可能であることである。欠点は、それらが扱いにくく、不要に、価値ある空間を占めることである。
(i)落射照明センサー
図37を参照して、蛍光活性化液滴仕分けサイトメトリーシステム用の本発明の自動化連続較正システム4201は、液滴33の内容を感知するように置かれて、液滴荷電用の遅延設定を確証する１以上の落射照明センサー4203を含む。図38を参照すると、各落射照明センサーは、光源(図示せず)、光ファイバーケーブル4205、ダイクロイックフィルター4207、レンズシステム4209、光検出器4213、および制御システムを含む。１つの例示的な具体例において、プロセッサー131は、制御システムとして作用するが、他のプロセッサーまたは制御を代わりに使用することができる。
光源は、自動化較正システム4201のみに使用される低電力固体レーザーであってもよい。別法として、ビームスプリッタ(図示せず)を使用して、流体流21中の粒子の問い合わせで用いるビーム25におけるエネルギーの一部（例えば約5%）を１以上の落射照明センサー4203に転ずることができる。同様に、光ファイバーケーブル4209は、ビームストップ4215(図26)に置かれて、問い合わせ位置115を通過した後に、ビーム25から光を集める。光源からの光は、仕分けられる粒子において、蛍光分子を励起することが可能な波長 を有する光を含み、それにより、粒子から蛍光発光4211を生じさせなければならない。例えば、もし粒子がHoechst 33342で染色されれば、光源は、約350nm、約407nmの波長またはHoechst 33342分子を励起することが可能ないずれかの他の波長を有する光を供することができる。
光ファイバーケーブル4205は、光源から問い合わせ位置115の下流の位置まで延びる。例えば、例示的な具体例において、光ファイバーケーブル4205は、偏向板629の間の電界を通って動く時、液滴流れのうちの１つの軌道に隣接した位置へと導く。ダイクロイックフィルター4207は、光ファイバーケーブル4205の末端の前に置かれる。ダイクロイックフィルター4207は、光ファイバーケーブル4205によって導かれる光のスペクトル特徴を有する光を伝達するが、蛍光発光4211のスペクトル特徴を有する光を反射する。従って、ダイクロイックフィルター4207は、落射照明光学器具417と関連して上記されたダイクロイックフィルター477と同じ規格を有し得る。各センサー4203の照明／検出容量が液滴33の容量とほぼ同等であるように、レンズシステム4209の焦点距離は、液滴33からのセンサー4203の予測される距離に基づき選択される。
図37で示される例示的な具体例を参照して、落射照明センサー4203は、３つの仕分けられた液滴流れ4225、4227、4229の各々の軌道に隣接して置かれて、それぞれの流れにおいて、液滴33の内容を感知する。サイトメーターシステム9は、２つの偏向プレート629を取り付けるための電気的絶縁サポート4221を含む。サポートは、３つの穴4223、各仕分けられた液滴流れ4225、4227、4229の軌道に隣接したものを有する。落射照明センサー4203は、各穴4223に置かれて、それぞれの穴4223を通って、液滴流れ4225、4227、4229のうちの１つの中の液滴33を観察する。このコンパクトな配置は、比較的ほとんど空間を必要とせず、較正システム4201の要素を避け、そうすることで、サイトメーター9の他の部分により良いアクセスを供する。
もし蛍光粒子を含有する液滴が、センサー4203の照明/検出容量を通過すれば、これは蛍光発光4211のフラッシュを招き、そのうちのいくつかはレンズシステム4209によって収集され、ダイクロイックフィルター4207から光検出器4213へと反射される。光検出器4213からのシグナルは、プロセッサー131に提供される。光検出器4213から受け取られたシグナルに基づき、プロセッサー131は、仕分けられた液滴流れ4225、4227、4229の各々における液滴33の含有量を決定することができる。
もしプロセッサー131が蛍光粒子を含有する液滴33が該センサー4203の近くを通過するのを予測している時に、センサー4203が蛍光発光4211のフラッシュを検出するのに失敗すれば、プロセッサー131は、該情報を使用して、遅延設定を調整するか、あるいは液滴破壊位置107の位置を調整することができる。同様に、プロセッサー131は、もしプロセッサー131が粒子を含有する液滴33がセンサー4203の近くを通過するのを予測していない時に、センサー4203が蛍光発光4211を検出すれば、調整を行うことができる。さらに、プロセッサーは、検出された蛍光発光4211の周波数が予測される周波数にマッチするかを確認するために、仕分けられた流れ4225、4227、4229からの蛍光発光4211の相対的な周波数を比較することができる。また、プロセッサー131は、荷電要素631に適用される電荷の振幅を調整して、仕分けられた流れ4225、4229が偏向されて、検出された蛍光発光4211の強度を最大化する量を増加または減少することができる。これにより、液滴が落射照明センサーの収集容量を直接通過するように、偏向された液滴流れ4225、4229の軌道の並列を維持することができるだろう。センサー4203は、流れ4225、4227、4225が偏向板629の間の電界を通って動く時に、それらを観察するように置かれるため、較正システムは、もしそれが偏向プレートの下流の急降下領域で、流れ4225、4227、4229を観察すれば、より短い応答時間を有する。
(ii)空液滴テスト流れ
較正の質の１つの高感度の指標は、実質的に空の液滴33のみを含有する較正テスト流れを作り、モニタリングすることによってアレンジすることができる。図37に示される仕分け較正システム4201を参照して、所望の粒子を含有する液滴33は、流れ4225に仕分けられ、いずれかの他の粒子を含有する液滴33および空の液滴33のほとんどは、流れ4229(つまり、廃棄流れ)へと仕分けられる。テスト流れ4227は、空の液滴33の少なくとも画分(例えば、10毎に1)に、中性電荷を適用することによって作られる。慣用的仕分け目的のために、「空」と考えられる多くの液滴33は、実際には、問い合わせ位置115の粒子の到着時間および流体の流れ21の予測される液滴形成境界に基づき、液滴33が粒子を含有する可能性がほとんど無い液滴33である。これらの「空」液滴は、これがテスト流れ4227でいくつかの粒子の検出を招かざるを得ないため、テスト流れ4227に仕分けられるべきではない。
代わりに、テスト流れ4227に対して、プロセッサー131は、実質的に粒子の無いテスト流れ4227を作るために、粒子を含有する可能性が実質的にゼロであるとプロセッサー131が判断する液滴33のみを選択するべきである。いずれかのランダムに選択された液滴33が細胞を含有する可能性は知られており、大体、液滴発生率によって分けられた平均的な細胞分析速度である。これは、テスト流れ4227における誤仕分けの割合をモニタリングすることによって、液滴33形成の位相をマッチするのに必要な液滴荷電の位相関係の僅かな調整を予測することが可能であることを意味する。例えば、プロセッサー131は、それが見積もって、粒子を含有する約15%以下の確率、粒子を含有する約10%以下の確率、粒子を含有する約5%以下の確率、粒子を含有する約1%以下の確率、粒子を含有する約0.1%以下の確率、粒子を含有する約0.01%以下の確率、粒子を含有する約0.001%以下の確率、粒子を含有する約0.0001%以下の確率を有する液滴を選択することができる。実質的にゼロの可能性の確率的なカットオフは、仕分け速度、不純物に対する許容性、または他の仕分けパラメーターに基づき選択することができ、カットオフは、高速仕分けに対して、あるいは不純物につきより許容性がある場合に、液滴が粒子を含むより高い確率を含む。
テスト流れ4227中の粒子を含有する液滴33の閾値数以上の検出によって示されるように、実質的に粒子なしのテスト流れ4227(つまり、液滴33の合計数に対する粒子を含有する液滴33の比率が、テスト流4227につき液滴33を選択するのに用いられる確率的なカットオフに合致するテスト流4227)を作ることのプロセッサー131の失敗は、サブ最適仕分けの決定的な指標であり、プロセッサー131が遅延設定を落とすように促す。閾値レベルは、テスト流れ4227に対して液滴33を選択するのに使用される確率的なカットオフおよびテスト流れ4227に対して選択される液滴33の総数に関連して決定される。理想的には、流体流21中の１以上の粒子は、わずかにサブ最適な液滴遅延設定に対してシステムをより感受性とする各液滴33についての見積もった液滴形成境界に比較的近いが、テスト流4227につきいくつかの液滴33を選択することができる。
もちろん、仕分け較正システムは、本発明の範囲から逸脱することなしに、非中性電荷を適用し、テスト流れに対して選択された液滴を偏向することができる。流れ4225、4227、4229の相対的順序は、また、廃棄流4225および所望の粒子4229の流れの間のテスト流れ4227の間に入ることは、（例示的な具体例において示されるように）廃棄流による仕分けられた試料のクロスオーバー汚染のリスクを減らすが、本発明の範囲から逸脱せずに並べ直すことができる。さらに、もし粒子が蛍光を発光しないなら、本発明の範囲から逸脱することなしに、異なるセンサーを使用して、テスト流れ中の粒子によって生じるいずれかの散乱光を検出することができる。
(iii)仕分け較正システムのインパクト
本発明の１つの具体例において、自動化較正システム4201は、最適な位相の約5%内(つまり、+/-約18度内。もう１つの具体例において、システム4201は、最適な位相の約1%内(つまり、+/-約3.6度内)に、位相関係を自動的に決定し、設定するように操作可能である)に、液滴形成および液滴電荷の間の位相関係を自動的に決定し、設定するように操作可能である。もう１つの具体例において、較正システム4201は、高速液滴仕分けシステムを継続してモニターし、最適位相の約10%内(つまり、+/-約36度内)に、位相関係を自動的に維持するように操作可能である。さらにもう１つの具体例において、システム4201は、高速液滴仕分けシステムを継続してモニターし、最適位相の約3%内(つまり、+/-10.8度内)に位相関係を自動的に維持するように操作可能である。
仕分けシステム欠陥修正
時々、液滴33は、その正常な軌道から反れ、荷電要素631または偏向板629にぶつかるだろう。もし１以上の液滴33が荷電要素631にぶつかれば、荷電要素631は、液滴33を適切に荷電しないかもしれない。さらに、荷電要素631を通る正常な液滴33軌道は、妨害されて、さらに多くの液滴33を生じ、荷電要素631上に蓄積し得る。また、もし遊離液滴33が偏向板629にぶつかれば、それらは変形し得、あるいはさもなければ偏向板629の間の電界線を破壊し、それにより、仕分けられた液滴流123、125の軌道を変化させる。
従って、デブリス除去システムを有して、荷電要素631および／または偏向板629からデブリスを除去するのが望ましい。図26および27に示される１つの例示的な具体例において、システム9は荷電要素631のためのデブリス除去システム5047および偏向板629のためのデブリス除去システム5049を含む。
図27を参照して、荷電要素631は、調整可能な取り付けアセンブリ5001のボード5015に固定されたサポート5051によって置かれる。真空路5053(幽霊線で示される)は、サポート5051を通って、荷電要素631に隣接した開口5057まで延びる。真空路5053は、サポート5051上の接続金具5058に付着した真空ライン5055によって適当な真空源(図示せず)に接続される。適当な制御は、通路5053において、選択的に真空を適用して、荷電要素631からいずれかの望ましくない物質(例えば、遊離液滴33)を吸い取り、荷電要素631の適切な機能を回復するために提供される。
関連して、図27に示されるように、取り付けアセンブリ5001に固定された連結管5061は、その中に(幽霊線で示される)、エアーライン5059および接続金具5065を介して、圧縮された空気または他のガスの源(図示せず)へと接続された空気の通り道5063のネットワークを有する。通路5063は、各偏向板629の側面5066に沿って置かれた開口5064を有し、開口5065に続く通路5063の部分5067は、連結管5061を通る圧縮された空気が偏向板629からいずれの遊離液滴33または他のデブリスを排除するように置かれる。偏向板629から流れるいずれかの物質は、カバーパネル(図示せず)に辺り、適当な廃棄物収集デバイス(図示せず)に流れる。
１つの具体例において、例えば上記の仕分け較正システムによって示されるように、もしプロセッサーまたは他のセンサーが、散在する液滴33が荷電要素631または偏向板629にぶつかったと決定すれば、プロセッサーは、自動的に、欠陥修正手順またはモードを開始することができ、これは通路5053に真空を適用して、荷電要素631から物質を吸い取ることおよび／または通路5067に圧縮されたガスを送って、偏向板629から物質を吹き飛ばすことを含むことができる。
欠陥モードの仕分けられた試料の保護
また、システム9の１つの具体例は、汚染防止メカニズム4041(図26)を含み、これはプロセッサー131によって活性化されて、仕分けシステムが欠陥修正モードにある時はいつでも、仕分けられた試料の汚染を制限または防止することが可能である。汚染防止メカニズムは、シールド位置(図26に示される)および非シールド位置(図示せず)の間の振りアーム4045を選択的に動かすように操作可能である空気圧式アクチュエータ4043を含む。シールド位置において、振りアーム4045の末端4047は、収集容器4033の開口を覆い、それにより、収集容器4033による液滴33の収集を防止する。非シールド位置において、収集容器4033はカバーされない。通常、振りアーム4045は非シールド位置にあるが、プロセッサー131は、プロセッサー131が汚染のリスクがあると決定する(例えば、ノズルシステム101が詰まる、液滴破壊位置107が不安定になる、または遊離液滴33荷電要素631または偏向板629にぶつかった)時、アクチュエータ4043をシールド位置へと動かす。振りアーム4045の末端4047は、槽状で、振りアーム4045によって収集されたいずれかの流体を廃棄物容器4035へと流す。
流体送達システム
上記のシステム1は、選択された特徴によって仕分けられた粒子(例えば、X-精子細胞)の量を効率よく生成することが可能である。生成の速度は、流体送達システム15(図2)がキャリアー流体17およびシース流体19をノズル137に送達する速度を変動させることによって増加または減少できる。１つの具体例において、流体送達システムはシリンジポンプ645を含み、そのようなポンプの一例は、Hamilton Companyから入手可能なMICROLAB（登録商標）Model PSD/3である。ポンプ645は、約20μl/分の速度にて、キャリアー流体17をノズル137に送達するように操作可能である。一般的には、ポンプ645は、10-50μl/分の範囲の速度にて、試料流体17をノズル137に送達するように操作可能でるべきである。ポンプ645は、フローライン647によって、分析され仕分けられる物質の容量を含有する適した容器649であってもよいキャリアー流体17の供給へと接続される。例えば、精子細胞の場合においてのように、分析される粒子の温度が一要因である場合、容器649の温度は、加熱/冷却漕(図示せず)のような適した温度調節システムによって制御することができる。シリンジポンプ645は、摂取ストロークを通って移動して、供給容器からのキャリアー流体を吸引することができ、排出ストロークを通って移動して、供給ライン651を通ってキャリアー流体17をノズルシステム101の注入針157に分配することができる。ポンプ645は、好ましくは、プロセッサー131の制御下で、可変のスピードモーター(図示せず)によって駆動される。一例として、ポンプ645は選択的に可変な速度で作用するステッパーモーターによって駆動されて、所望のスループットを得るのに必要な速度にて、針159にキャリアー流体17を押し出してもよい。流体送達デバイスの他のタイプを、シリンジポンプの代わりに使用してもよい。たった１つの例を提供するために、容器649を、本発明の範囲から逸脱せずに、圧縮されたガスによって圧縮することができる。さらに、ライン647、651を現実的に可能な程度に短く保つのが望ましい。なぜならば、ライン環境は、キャリアー流体17中にあり得る感受性細胞（例えば、精子細胞）の健康に導かないからである。
シース流体19の供給7は、例えば、その中に制御弁669を有する供給ライン667によって、ノズルシステム101のフローボディー133における半径内径173に接続された適切な容量のシース流体19を保持する図2中のタンクといった第２の容器661を含む。図1の具体例において、シース流体容器661は、その中にレギュレーター681を有する、タンク661に供給された圧力を制御するためのエアーライン679を介してタンク661に連絡する圧縮ガス（例えば、空気、または窒素のような他のガス）の源675を含むガス圧システム671によって圧縮される。エアーライン679中の二方弁683は、タンク661およびガス源675の間の連絡を確立する第１の位置と、タンク661を換気する第２の位置との間を動くことができる。ガス圧力調節装置681は、好ましくはプロセッサー131の制御下にある慣用的な調節装置である。また、タンク661圧力を制御することによって、シース流体19がフローボディー133に送達される圧力を調節してもよい。この圧力は、16ないし100psi、より好ましくは10ないし50psi、さらにより好ましくは15ないし40psi、さらにより好ましくは約20ないし30psiの範囲であってもよい。シース流体19がフローボディー133に供給される圧力は、本発明の範囲から逸脱せずに、他の方法で制御することができる。
図26を示す１つの具体例において、流体送達システム15は、シース流体タンク(図示せず)およびサンプルステーション4051を含む。サンプルステーションは、試料管4055を保持するように調整された２部圧力容器4053を含む。圧力容器の底部セクション4057は、試料管4055を負荷し、または負荷解除できる開いた位置（図26に示す）と、圧容器4053の２つのパーツ4057、4059が一緒になって、キャリアー流体17を試料管4055からノズルシステム101にポンプ送液するのに用いられる圧縮ガスを含むようにシールを形成する閉じた位置（図示せず）との間の、圧力容器4053の上方セクション4059に対して上下に移動することができる。
圧力容器が開いている時、スプリングバイアスド振りアーム4071は、キャリアー流体17をノズルシステム101まで送達するライン651の直下の位置まで移動する。振りアーム4071は、トラフ形状であり、ライン651を通ってバックフラッシュした流体を集め、バックフラッシュした流体をポート4073を通って廃棄容器まで排出するよう適合される。圧力容器4053がその開いた位置からその閉じた位置へと動くにつれ、圧力容器4053の底部セクション4057に付着したカムプレートをそのスプリングバイアスに抗して振りアーム4071まで移動させて、２つのセクション4057-4059の間の領域をきれいにし、圧力容器4053を閉じさせる。
制御
図2を参照して、マイクロプロセッサー131(または他のデジタルまたはアナログ制御および／またはプロセッサー、またはその組合せ)は、システム1の操作を制御する。図39に関して下記されるように、マイクロプロセッサーは、システム制御プロセッサーおよびシグナル処理を扱うための４つのプロセッサーとして実行してもよい。別法として、いくつかまたは全ての機能が１以上のプロセッサーに統合されてもよい。例えば、システム制御マイクロプロセッサー(図36参照)は、４つのシグナル処理プロセッサーのうちの１つを使用することによって実行可能である。加えて、下記のように、シグナル処理は、アナログ回路(例えば、図39に示されるように、アナログ細胞アナライザー)またはアナログおよびデジタル回路の組合せによって実行され得る。
マイクロプロセッサー131は、落射照明システム415から受け取られたインプットシグナルに応答して、流体送達システム15(下記)を制御するためのアウトプットシグナルを提供し、破壊センサー389から受け取られたインプットシグナルに応答して、変換器105を制御するためのアウトプットシグナルを提供し、落射照明システム415から受け取られたインプットシグナルに応答して、仕分けシステム119(下記)を制御するためのアウトプットシグナルを提供する。マイクロプロセッサー131は、本明細書中の他のところで記されるように、サイトメトリーシステム9の他の部分に、アウトプットシグナルを提供し得る。
さらに、マイクロプロセッサー131は、リアルタイムで情報を処理し、アウトプットシグナルを提供するように適合され得る。広範に言えば、用語「リアルタイム」は、プロセッサー131の操作速度がヒトの時間の認識にマッチする操作、またはプロセッサー131の操作速度が関連する物理的または外部的処理の速度にマッチする操作をいう。１つの文脈において、用語「リアルタイム」は、事象が古くなる前に、システムが事象に反応することを示し得る。
一般的には、落射照明システム415からの電気シグナルは、対応するデジタル情報をマイクロプロセッサー131に供給するA/D変換器689によって、デジタル情報に変換される。情報に応答して、マイクロプロセッサー131は、仕分けシステム119および流体送達システム15を制御し、両方とも上記される。
落射照明システム415の光検出器117からの電気シグナルアウトプットは、それがレーザービーム25によって照射されるにつれ各細胞によって生じた、いずれかの瞬間の発光蛍光31の振幅を示す時変アナログ電圧シグナルである。従って、アナログシグナル(アナログアウトプットとも呼ばれる)は、図52および53において模式的に示されるように、時変波形パルス497の形状である。一般的に、波形パルス497は、１以上のパルスまたはパルスのいくつかの部分を含有する波形または波形の一部として定義される。従って、いずれかの瞬間の各波形パルス497の振幅は、細胞がレーザービーム25を通過する時のその瞬間における各細胞のフォトン発光31の相対速度を表す。X染色体ウシ精子細胞は、Y染色体ウシ精子細胞(例えば、約3.8%)より高いDNA含有量を有する。結果として、上記のように蛍光染色によって標識された生X細胞は、いずれかの他の標識された細胞からのパルスとは異なる波形パルス497を生成するだろう。下記のように、パルス497を分析することによって(シグナル処理、スリットスキャニング、および臨界勾配差参照)、各細胞は、X細胞として同定されてもよくあるいはX細胞(〜X)として同定されなくてもよい。一般的に、本明細書中に使用されるように、X細胞は生X細胞を指し、Y細胞は生Y細胞を指し、〜X細胞は、生Y細胞およびさもなければ検出可能な蛍光発光31を生成するが、生X細胞として合理的な確率によって同定することができない細胞の組合せを指す。
各波形パルス497のタイミングは、流れ21中の各細胞の位置を示す。シース流体19がノズル137を通って送達される速度は一定であり、ノズル137および液滴破壊位置107の間の距離d(図25中)は知られているため、各細胞の位置は知られ、各液滴33中の細胞が、もしあれば、知られている。従って、マイクロプロセッサー131は、液滴を形成する各々が荷電カラー631を通過する瞬間を計算でき、カラー631の極性を計算でき、かくして液滴33が、仕分けシステム119の荷電要素631による偏向のために荷電されたか否かを制御することができる。マイクロプロセッサー131は液滴形成速度を知っており、液滴内の細胞をXまたは〜Xとして同定するため、マイクロプロセッサー131は各液滴33の細胞含有量を知り各集団123、125中の細胞の数を把握または列挙する、下記のように、仕分け方法によって、マイクロプロセッサー131は、どの液滴33が偏向のために荷電され、どの液滴33が偏向されないように荷電されないかを決定する。
シグナル処理
A.デジタル試料導入
前述のように、レーザービーム25および粒子の相互作用は、光学システム109の収集レンズ511によって捕獲され、光検出器117へと送達される「パルスド」フォトン発光31(例えば、蛍光発光)である。光検出器117は、時変振幅のアナログ電圧アウトプットによって、適切な時期にすぐに、光子エネルギーを変換する。このアウトプットは、粒子の集団間を識別するのに使用可能な多くの特徴を含有する一連の波形パルス497(図43および44)である。これらの特徴の中には、総フォトン発光、レーザービームを通る粒子の空間転移の機能としてのフォトン発光の速度、転移の間のフォトン発光の最大速度、転移の間のフォトン発光の平均速度、および転移に必要な時間がある。レーザービーム幾何学459、粒子サイズ、粒子容量および粒子速度を通る発光源の分布の組合せは、波形パルス497の周波数スペクトルを決定する。前述のウシ血清と使用されるシステム1に関して、各細胞201は、持続時間が800nsおよび1200nsの間の波形パルス497を生成すると決定された。また、周波数の機能として、波形パルス497の電力の97%以上が、30MHzを下回る周波数で送達されることが決定された。この周波数スペクトルは、ナイキスト（Nyquist）サンプリング定理に関係するため、後に論議されるだろう。総合すれば、これらの波形パルス497は、連続的で、時変の光検出器117から、アウトプットシグナル701、装置を通って粒子流れの転移を表すシグナルを形成する。集団間を区別するのに使用される個々のパルスの特徴に加えて、時変シグナルは、装置を通過する個々の粒子の間の相対的間隔(時間および場所)および装置を通って動く粒子の相対的速度に関して、正確な記録を提供する。この正確な時間、位置および速度記録は、図44に示されるように、液滴発生クロックシグナル703と同調させて、どの粒子が液滴発生装置105によって形成された特定の液滴33のメンバーであるか決定することができる。この情報を、「同時発生」または単一の液滴33中の所望のまたは望ましくない粒子の出現率を決定するための基準として使用することができる。液滴33中の各粒子の数および分類を正確に決定する能力によって、正確で、効率的な仕分けが可能になる。
図72に示されるように、デジタルシグナル処理705を使用して、光検出器117からの同調してサンプリングされたアウトプットシグナル701によって示されるように、蛍光パルス31の検出を分析してもよい。この処理は、本明細書中に記載されるように、指令および／またはアルゴリズムを用いるパルス分析ソフトウェアで実行されるであろう。光検出器117の時変アナログアウトプットシグナル701は、それを同調してサンプリングするA/D(アナログ/デジタル)変換器689に提供される。同調してサンプリングするとは、サンプリングして、アナログアウトプットに対応するデジタル情報を生成することを意味する。また、同調してサンプリングするとは、連続してサンプリングするまたはストリーミング収集とも呼ばれる。下記されるように、サンプリング速度は、アナログアウトプットの周波数スペクトルによって決まる。
変換器689は、マイクロプロセッサー131またはパルス分析ソフトウェアを実行して、デジタル情報707を分析する他のデジタル分析デバイスに提供されるデジタル情報707を含むアウトプットを提供する。一般的には、パルス分析ソフトウェアは、デジタルパルス検出HH3、パルス特徴抽出HH4およびパルス区別HH7を含むだろう。
B.サンプリング周波数およびシグナル周波数スペクトル
PMT117からのシグナルアウトプット701は、105MHzの周波数にて、連続して、アウトプット701をサンプリングする高速アナログ・デジタル変換器689(ADC)によって捕らえられる。時変シグナルをサンプリングする時、サンプリング周波数がサンプリングされるシグナルに含有される最大周波数の少なくとも２倍であることが必要であることがよく理解される。これは、ナイキスト（Nyquist）サンプリング定理として知られる。この理由のため、PMT117からのアウトプットシグナル701は、40MHz低域通過フィルター854を通ってまず送られて(図39参照)、シグナル701に含有される最大周波数が、サンプリング速度によって課された52.5MHz制限下であることを確証する。装置1の光学109、流体15および検出システムは、105MHz速度にてサンプリングするための最適な周波数特徴を有するパルス波形497を生成するように調整されていることに注意するのは重要である。サンプリング速度は、本発明の範囲から逸脱することなしに、約25および200MHzの間を変動し得る。
C.パルス処理
パルス処理は、メモリーを共有し、高速平行ポートによってもう一方に接続される４つの(4)TigerSharcDSPプロセッサーで起こる。図39に示されるように、４つのプロセッサーは:1)光検出器117からのアウトプットシグナル701をデジタル化する高速ADC689からデータを受け取るデータ管理プロセッサー863;2) デジタル情報によって表される波形パルス497を検出するパルス検出プロセッサー865;3)特徴抽出および検出されたパルス497から特徴を抽出し、抽出された特徴に基づき、パルス497を識別する識別プロセッサー867;および4) 抽出された特徴および識別に基づき、各パルス497に対して仕分け分類を決定し、対応する細胞および液滴33に対して仕分け決断を決定し、液滴形成105と同調する仕分けプロセッサー873である。一般的には、プロセッサー863、865、867、873は、タスクを完了し、コンパニオンプロセッサーが処理するのが可能なデータがあると分かるように、「フラッグ」を設定する。
各プロセッサー863、865、867、873は、他とは独立して動き、お互いを妨害しないため、全体的なスループットを最大化する。従って、いずれかのプロセッサー863、865、867、873は、いずれかの機能を実行することが可能であり、１以上のプロセッサーまたは機能が単一のプロセッサーへと組み合わされてもよく、あるいは複数のプロセッサーに分けられてもよい。上記で使用されるように、プロセッサー863、865、867、873は標識し、この適用は、便宜のためのみに使用され、とにかく制限するように意図されていない。
全ての４つのプロセッサー863、865、867、873は、情報を交換するためにDSPボードSDRAM851に連結され、PC735および仕分けパルス発生器861に接続された末端I/Oバス859との同調および通信のために、プロセッサーインプット/アウトプット(I/O)857に連結される。プロセッサーI/O857は、通信リンクによって接続された２以上のSharcFIN I/Oプロセッサーによって使用され得る。仕分けシグナル853は、末端I/Oバス857を介して、PC735に提供され、液滴33の電荷を制御する仕分けパルス発生器861を制御するのに使用される。
プロセッサーI/O857は、例えば、持続された105MHz/1-チャネルが可能なBitware Corp. 105MHz/2-チャネル, 14ビットといったアナログ/デジタル変換器(ADC)689から、アウトプット707を受け取る。ADC689は、その時変アナログアウトプットシグナル701をデジタル情報707に変換するために、光検出器117アウトプットに接続され、また、ADC689からデジタル情報のブロックを保存するために、I/OボードSDRAM855に接続される。
一般的には、光検出器117からのアナログアウトプットシグナル701は、特徴Aまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標である。A/D変換器689は、フローサイトメトリーシステム1の光検出器117からのアナログアウトプットシグナル701を対応するデジタル情報707に変換する。プロセッサー863、865、867、873は、デジタル情報707を分析し、分類し、仕分けシグナルを仕分けシステム119に、検出され分類されたデジタル情報の関数として提供する。
D.データ取得
前述のように、光検出器117からのシグナルアウトプット701は、105MHzの周波数にて、連続して、アウトプットをサンプリングする高速アナログ・デジタル変換器(ADC)689によって捕らえられる。データ(デジタル情報707)は、着信データを緩衝する働きをする高速メモリーブロック(I/OボードSDRAM)855へとすぐに移される。これらのメモリーブロック855は、データ流707の完全性および並びを維持するように整理される。また、これらのメモリーブロック855は、直接的なメモリーアクセス(DMA)によって、デジタルシグナル処理(DSP)プロセッサー863、865、867、873によってアクセス可能である。このように、プロセッサー863、865、867、873は、ADC689を妨害せずに、着信データ707にアクセスできる。これによって、特徴抽出、分析および仕分け分類のための、データ707のこれらのプロセッサー863、865、867、873への効率的な移動を促進される。このプロセスを通して、データ管理プロセッサー863は、パルス試料707を整理し、時間をインデックス(液滴33周波数の128倍であるマスタークロック737に相対的な)して、「リアルタイム」への言及または細胞がレーザービーム25を通過する実際の時間を保存する。ADC689は、２つのインプットの間を行ったり来たりし、波形パルス497を含む時変アナログアウトプットシグナル701を継続してサンプリングし、それらを、データ管理プロセッサー863の制御下で、I/OボードSDRAMにブロック855で提供されるデジタル情報707に変換する。プロセッサー863は、情報707を連続した流れへとまとめる。
E.検出パラメーターを開始する
バックグラウンドノイズを効果的に識別するために、デジタルパルス検出ソフトウェア747は、シグナルバックグラウンド二次統計を示す情報、つまり、蛍光パルス497がない時に、光検出器117からのアウトプット電圧シグナル701の動きの知識を提供されるべきである。これらの統計学は、システム1のスタートアップの直後の開始時間の間、監視されていない様式で、検出パラメーター741を開始するためのソフトウェアによって学習され得る。一般的には、パルスは、バックグラウンドレベルから2または3の標準偏差として規定することができる。
シース流体流191へのキャリアー流体17の導入がバックグラウンド蛍光発光の変化を生じ得る可能性のため、キャリアー流体17は、検出パラメーターの開始に存在しているべきである。アウトプット電圧シグナル値の時間系列の二次統計の単純な計算は、バックグラウンドの標準偏差を多く見積もりすぎ得る(系列における蛍光パルス497の潜在的な可能性のため)。従って、反復法は、この効果を徐々に排除するのに好ましい。パルス検出ソフトウェア747は、これを、総シグナル701(バックグラウンド+パルス)の統計を計算し、これらの値を使用して、パルス検出論理を適用し、パルス内であると検出された試料なしで、シグナル統計を再計算し、バックグラウンド統計予測が収束する(または反復の固定最大数が生じる)まで、この手順を繰り返すことによって達成する。存在する細胞でバックグラウンドを評価することによって、予測される正確なパルス497振幅のより正確な指標を決定することができる。表IIは、パルス検出ソフトウェアによる使用のための検出パラメーターを決定するための検出初期設定手順を要約する。
Figure 0004614947
一般的に、A/D変換器689は、アナログアウトプットシグナル701を、光検出器117から、特徴Aまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標である対応するデジタル情報707に変換する。デジタルシグナルプロセッサー865は、それに対応するデジタル情報707からの時変アウトプットシグナル701のバックグラウンド特徴を決定し、決定されたバックグラウンド特徴の関数として、デジタル情報707から波形パルス497を検出し、検出されたパルス497の関数として仕分けシステム119に仕分けシグナル853を提供する。
F.初期設定識別パラメーター
検出パラメーターと同様に(および表IIに示されるようにそれらの初期設定に続いて)、識別アルゴリズムでの使用のためのパラメーターを、監視されない様式で初期設定することができる。しかしながら、検出アルゴリズムパラメーターとは違って、反復法は不要である。この場合、識別パラメーター745を初期設定するためのソフトウェアは、蛍光パルス497の現在の数(例えば、100,000)を検出し、各検出されたパルス497のための識別に使用される特徴を計算し、クラスタ化手順(候補クラスタ化手順の概要につき、表II参照)を用いて、これらのパルス497を関心のある集団(例えば、X、〜X)に付与する。
Figure 0004614947
図73は、分布の統計に基づき、集団1および集団2を規定するために、k-平均法クラスタ化手順の適用の結果の例を含有する。次いで、これらの集団の二次統計を使用して、識別に必要なパラメーターを設定する(一次または二次多項式決定関数の係数)。表IVは、識別初期設定手順の要約である。
Figure 0004614947
一般的には、A/D変換器689は、光検出器117からのアナログアウトプットシグナル701を、特徴Aまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標である対応するデジタル情報707に変換する。デジタルシグナルプロセッサー867は、デジタル情報707に対応する初期識別パラメーターを発生させ、初期識別パラメーターの関数としてデジタル情報を識別し、識別されたデジタル情報の関数として、仕分けシステム119に仕分けシグナル853を提供する。
G.デジタルパルス検出
第１の処理工程は、パルス検出プロセッサー865によって行われて特定の波形が細胞の蛍光発光31に対応する波形パルス497か否かを決定するパルス検出である。プロセッサー865は、パルス検出アルゴリズムを実行し、これは集団に仕分けするための標的化粒子または回避すべき標的化粒子いずれかを表すようである試料組を同定する。何故ならば、それらは集団に対する潜在的汚染物だからである。ウシ血清仕分けの場合、色素を添加して、生育不能な細胞の発光31をクエンチして、それらの関連したパルス強度を、生存能力のある細胞の強度の〜1/3にする。生育不能な細胞は、仕分け標的または潜在的汚染とは考えない。それらは、検出されたパルス497とは考えない。生細胞からのパルス497は、バックグラウンドレベルを超える試料の連続する数につき、試料の強度をモニタリングすることによって検出される。一旦、このレベルが、統計学的に決定された閾値と交差すると、プロセッサー865は、生細胞についての予測されるパルス497の幅のほぼ75%であるより後の時刻にジャンプする。もしレベルがまた閾値を上回っていれば、一連の試料パルス497であると考えられる。検出されたパルス497からの試料は、特徴抽出プロセッサー867によって使用されるメモリーのブロックまで動かされる。
統計上の変則検出アプローチは、デジタル化されたパルス497を同定および／または単離するための他のアプローチを使用してもよいと考えられるが、デジタルパルス検出ソフトウェア747によって使用され得る１つの具体例である。基本的に、バックグラウンドから統計学的に変則である蛍光を検出する光検出器117からのアウトプット電圧シグナル701のデジタル試料707は、パルス497の一部であると考えられる。(ノイズ検出を最小化するための)さらなるロバスト性のために、さらなる一時的な基準を含んでもよい。
パルス検出は次のように進行する。光検出器117からの電圧アウトプットシグナル701がパルスでない時、シグナル701の入り試料707のバックグラウンドからのマハラノビス距離が計算され、現在の閾値と比較される。もし所与の試料の距離が閾値を超えれば、パルス497の潜在的な開始と考えられ、パルス検出ソフトウェアは、入り試料を緩衝し始める。また、もし試料の次の所定の数(例えば、25)が閾値を超えれば、パルス497は、開始したと考えられ、緩衝は、パルス終了基準が達成されるまで続く;さもなければ、緩衝はリセットされ、パルスの開始のためのチェックは再開する。パルス497において、もし試料が閾値を下回れば、パルスの潜在的な終了と考えられ、緩衝位置が記録される(しかし、試料緩衝は続く)。また、もし試料の次の所定の数(例えば、25)が閾値を下回れば、パルス497は終了したと考えられ、パルス497は、記録された位置まで緩衝された試料よりなる。表Vはパルス検出アルゴリズムを要約し、図49は、デジタル的に獲得された蛍光パルス497に対するパルス検出の結果の図を提供する。
Figure 0004614947
一般的には、A/D変換器689は、光検出器117からのアナログアウトプットシグナル701を、特徴Aまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標である対応するデジタル情報707に変換する。デジタルシグナルプロセッサー865はデジタル情報を分析し、プロセッサー873は、仕分けシステム119に、検出されたデジタル情報の関数として、仕分けシグナル853を提供する。
H.特徴抽出および識別
次の処理工程は、特徴抽出およびプロセッサー867によって実施される特徴抽出である。このプロセッサーは、パルス検出プロセッサー865によって設定されたフラッグに応答する。検出されたパルスからの試料は、特徴抽出プロセッサー867と共有されるメモリーに置かれる。面積、パルス幅、パルス高、ガウス相関係数のような特徴および／または他の特徴は、各パルス497に対して決定される。いくつかのケースにおいて、パルス497は、「ダブレット」または無効であると決定され、特徴は抽出されない。ウシ血清精子201のケースに対して、特徴は、生XまたはY細胞の一般的な振幅および幅を有するパルス497に対して抽出されるだけである。典型的には、生精子細胞に対するパルス振幅は、約700-900mVの範囲であるが、この範囲は500-1000mVほどの広くてもよい。一旦、特徴が抽出されると、それらは、仕分けに選択された（複数の）集団に対して規定された特徴空間と比較される。もし特徴が、仕分けに対して同定された特徴空間と適合すれば、プロセッサー867は、プロセッサー873を仕分けする肯定的仕分けコマンドを示すフラッグを設定する。一般的には、特定の細胞の分類は、識別プロセッサー867によって行われ、仕分け決定は仕分けプロセッサー873によって行われる。
蛍光発光31を表すデジタル情報707(およびすなわちそれらを作った対応する細胞の特徴)は、注目する異なる集団についての特徴空間（軸としてのｎ個の特徴によって形成されたｎ−次元直交空間）において識別可能に統計的挙動を呈する特異的特徴に基づいて区別される。従って、識別の目的のためにデジタル情報707を分析する第１の工程は、これらの特徴の計算、プロセッサー867によって実行されるパルス分析ソフトウェア749によって行われる特徴抽出と呼ばれるプロセスである。表VIは、ソフトウェア749がこの適用のために使用し得るいくつかの候補特徴をリストする。１以上のこれらの特徴は、分類のための特徴スペースを形成するために選択されるだろう。このリストが例示的なものであって、包括的なものでないように、さらなる分離を提供するさらなる特徴が存在することは注意すべきである。例えば、ソフトウェア749は、サブルーチン753を使用してパルス497領域を決定および／またはサブルーチン755を使用してパルス497ピークを決定してもよい。
Figure 0004614947
I.スリットスキャニング
一般的には、照明システム109によって提供される楕円スポット459は、細胞中の相対的なDNA含有量差を測定する。解像度は、評価される特徴を含有する可能性がより高い光検出器117によって検出された蛍光発光31のパルス497の画分を分析することによって、さらに改善することができる。特定の細胞(例えば、ウシ精子細胞)の生物学的現象は、細胞の核の縦方向中央線または赤道または中央に直ぐに隣接する赤道下領域225におけるX/Y染色体の局在化である(図6参照)。事実、X/Y染色体は、必ずしも核213の中心にない。従って、解像度は、光検出器117の時変アナログアウトプット701をデジタル情報707に変換し、蛍光発光31のパルス497の画分に対応する、すなわち、パルス497ピークを中心とする波形パルスの20ないし60%、特に20ないし30%のように赤道周囲領域225から発せられた光に対応するデジタル情報の一部を解析することによって改良することができる。
上記のように、スリットスキャニングを使用して、全体としてのクロマチンからよりもむしろ各細胞のクロマチンの一部からの蛍光測定を得ることができる。もう一方に対するX細胞および〜X細胞の解像度が改善されるように、上記の落射照明システム415によって提供される楕円スポット459は、クロマチンの特異的なセクションから、細胞における相対的なDNA含有量差を測定する。上記のように、フォーカスされたスポットサイズ459の寸法が、図6に示されるように、細胞直径よりずっと小さくなるように、スリットスキャニング測定技術は、励起ビーム25をフォーカスする蛍光測定アプローチである。このように、細胞201は、細胞が楕円形状ビームスポット459を通過する時、レーザービーム25によってスキャンされる。スリットスキャン照明から得られた蛍光発光31を検出する光検出器117アウトプット701によて生成された得られた波形パルス497は、細胞201の長さに沿った蛍光の局所化に関する情報を含有する。図45-48に示されるように、細胞201が楕円形状のビームスポット459を横切る時、時変波形パルス497(赤/オレンジのライン)は、相対的ビーム強度(青いライン)および(細胞がビームを横切る時に楕円形スポットによって励起された染色からの蛍光発光に対応し、細胞の軸に沿った蛍光分布が変動するため、変動する)相対的な発光するパルス強度のコンボルーションである。
細胞のクロマチンの画分のみを、一時に照射することによって、光検出器117から得られた時変アナログアウトプット701は、細胞201の縦軸に沿ったクロマチン内の蛍光の局所化に特異的な情報を含有する。スリットスキャニングから検出された蛍光発光31は、細胞直径と同程度のスポット幅を有するビーム25によるスキャニングから検出された発光31未満であり、その結果、より低いパルス振幅を有するスリットスキャニングからの波形パルス497がもたらされ、X-染色体担持細胞およびX-染色体担持細胞の間の差の大部分は、波形パルス497の中心20-30%ないし20-60%に現れる。もし図53の長方形領域725のみを、X-Y精子細胞識別で考慮するなら、より大きい相対的な差を、細胞の総DNA含有量と比較して、該領域内のXおよびY染色体の存在による長方形領域725に対応するクロマチンのセクション内のDNA含有量の局所化された変動の間で測定することができる。例えば、ウシX-Y精子細胞は、約3.8%の総DNA含有量の差を有する。XおよびY染色体からの蛍光発光31は、長方形の領域725に含有されるだろう。もしこの長方形の領域725が蛍光発光31に対応する総波形パルス497の20%を占めるなら、領域内の相対的DNA含有量において、14%の差が存在するだろう。クロマチンの特異的なセクションからの相対的なDNA含有量差を測定することによって、X-Y精子細胞差の解像度が改善される(例えば、3.8%ないし14%)。図54は、スリットスキャニング照射を用いて、パルス497(つまり、図53の長方形領域725)の中心20%のみからの領域を処理することで達成できる解像度を示す。図54のヒストグラムは、精子を持つX染色体および精子を持つY染色体の非常に高いパーセンテージ(例えば、98%)が、十分な信頼性(例えば、95%)を持って、同定されるのを可能にする。相対的に、標準照射技術を用いた時に入手可能な解像度を示す図55のヒストグラムは、スリットスキャニングが、標準照射技術を用いて得られる結果より、有意な改善を提供することを示す。
図53に示されるように、波形パルス497の中心部分の領域725を得るのに使用可能な２つのアプローチは、このセクションで論議されるように、デジタル化された光検出器117時変アナログアウトプット701のデジタルシグナル処理(DSP)、または下記のようにアナログ閾値トリガーを用いるアナログ統合である。本明細書中で記されるように、DSP処理は、アウトプット701に対応するデジタル情報707を得るために光検出器117からの時変アナログアウトプット701を連続してサンプリングすることおよび異なる細胞201中のXまたはY染色体の存在によるDNA含有量の差に対応する波形パルス497の中心部分725に対応する
デジタル情報からの領域サイズのような特徴を抽出するためにDSPアルゴリズムをデジタル情報707に適用することを含む。単純な例として、各波形パルス497の総面積の中心20%は、それに対応するデジタル情報707を分析することによって決定されるだろう。分析を使用して、図53に示されるようなヒストグラムが生成されるだろう。
J.パルスレーザースキャニング
１つの具体例において、システム1が細胞を照射するパルスレーザーを含むことが考えられる。この具体例において、(上記の)スリットスキャニングを使用しても使用しなくてもよい。例えば、モードロックされた固定レーザーを使用して、約50-150MHzのパルス周波数にて、および約100-500ミリワットの平均電力アウトプットにて、1-100ピコ秒のパルス幅（持続期間）を有する電磁パルスの列を発光することができる。１つの適当なレーザーは、Vanguard350モードロック固定レーザー(Spectra-Physics, Mountain View, CA 94039から入手可能)であり、これは、約85ミリオンパルス／秒の周波数にて、および約350ミリワットの平均電力にて、幅（持続期間）約12ピコ秒のパルスを連続して発光するように操作可能である。350mWの電力は、たった12ピコ秒の非常に短いバーストで送達されるため、そのようなレーザーのピーク電力アウトプットは、平均電力より数百倍(例えば、約800倍)大きい。
多くの適用に対して、パルス反復速度は、連続波(cw)アウトプットに近づくのに十分速いため、そのようなレーザーのアウトプットは、準連続波(準-cw)として記載され得る。実際に、上記のようなシステムを、cwレーザーで操作するのとほとんど同じ様式で、半cwレーザーで操作することが可能である。固定レーザーは、典型的に、より効率よく操作し、あまり大規模でない冷却システムを要し、ほとんどの他のレーザーほど管理を要しないため、これは、ある種の利益を提供する。
また、準cwパルス固体レーザーによって、デジタルシグナル処理技術を用いる有意に改善されたシグナル対ノイズ率を得ることができる。タイミング回路が含まれてもよく、問い合わせ位置115(つまり、レーザービーム25が流れ21を照射する領域)にて、レーザーパルスの到達を示すタイミングシグナルを生成するように操作可能である。例えば、タイミング回路は、図40に示されるように、各レーザーパルスの流体の流れ21との相互作用によって生じた散乱光を含みおよび／またはレーザーパルスからの光を含むレーザーパルスに対応する光を検出するためのレーザーパルスセンサー3003であってもよい。別法として、トリガーされ得るレーザーに関して、トリガリングシグナルは、マイクロプロセッサー131および／またはA/D変換器689に提供されて、図50に関して下記されるように、いずれかまたは両方をレーザーパルスに同調してもよい。いずれかの具体例において、レーザーパルスタイミングは、システムに対して、クロックシグナルを提供するだろう。
図50を参照して、タイミングダイアグラムは、レーザーパルスLPと、細胞が光検出器アウトプット701のビームスポット459およびデジタル試料DSを通過する時にレーザーパルスLPにて反復励起の結果としての細胞からの蛍光発光FEとの間のタイミング関係を説明する。図45-49に示されるように、細胞がレーザービームスポット459を通過する時、蛍光発光31は、蛍光発光31を生じる細胞の部分の照射の量によって変動する。図50は、細胞がフローサイトメーター1の問い合わせゾーン115を通過する時、細胞に影響を与える２０の(20)レーザーパルスLP1-LP20を示す。各レーザーパルスLP1-LP20は、それぞれ、蛍光発光FE1-FE20に対応し、レーザーパルスによる実質的に瞬間的な励起の後に、急激に崩壊する。
それぞれ、デジタル試料DS1-DS20によって示されるように、変換器689が、各蛍光発光FE1-FE20のピークにてまたはその近くで、光検出器117のアウトプットシグナル701をサンプルするように、１つの具体例において、マイクロプロセッサー131は、A/D変換器689(図40参照)を制御する。つまり、タイミング回路は、A/D変換器689のサンプリング速度を蛍光発光FE1-FE20と同調する。問い合わせゾーン115を通る粒子の通過によって生成される得られたデジタルシグナルは、連続波レーザーからのパルス波形497のデジタル化によって生成されたであろうデジタルシグナルの関数的同等物である。図51に示されるように、例えば、デジタル試料DS1-DS20の間蛍光強度のみを考慮し、レーザーパルスLP1-LP20の間の蛍光強度減少を無視することによって、時間の関数としての蛍光強度は、パルス波形497である。これは、蛍光発光FE1-FE20を供する細胞を分析するために、パルスレーザーによって生成されるデジタルシグナル707からのマイクロプロセッサー131による特徴抽出を可能にする。１つの具体例において、2ナノ秒またはそれ未満の比較的速い応答時間を有するより感度の高い光検出器を使用して、より正確に蛍光発光を検出してもよい。
従って、パルスレーザーは、フローサイトメトリーシステム1において、より低い電力パルスレーザーを使用して、パルスレーザーの平均電力よりずっと高い平均電力にて作用するcwレーザーによって得られるのと実質的に同じ分析を得ることが可能であるという利点を供する。さらに、蛍光発光が最大化され、それにより光検出器のアウトプットシグナルのシグナル対ノイズ率を減少するように、パルスレーザーからの高いピーク電力はフルオロフォアを飽和する傾向がある。つまり、フルオロフォアを飽和するのに必要なエネルギーよりずっと多くを含有するレーザーパルスを用いることによって、レーザーのアウトプットの変動は、蛍光発光31の変動を生じる。
当業者は、レーザーに一連のパルスを放出させる多くの方法があることを認識するであろう。本発明の範囲から逸脱せずに、他のモードロックレーザー、Q-スイッチレーザー、空洞ダンピングレーザーを含む他のパルスレーザーを、上記で論議されたモードロックレーザーの代わりに使用できることが理解される。同様に、デジタルサンプリングの時間を測り、得られた情報を処理する多くの他の方法は、前述の開示から明白であろう。例えば、デジタルサンプリングは、本発明の範囲から逸脱せずに、レーザーパルスおよびデジタル試料の間に異なる遅延があるように（あるいは遅延が全くないように）時間を測ることができる。また、同様に、デジタルサンプリングの間に経過するデジタル試料の数／パルスまたはパルスの数は、本発明の範囲から逸脱せずに、変動し得る。
K.集団特徴の予測
上記のように、フローサイトメトリーを使用して、DNA含有量の相対的な3.8%差に基づき、ウシ精子細胞を有するXおよびウシ精子細胞を有するYを識別することができる。識別は、染色された細胞が問い合わせ位置115を通過する時に蛍光発光31を記録するのに使用される光検出器117によって生成される時変シグナル701の特徴の分析を介して達成される。この相互作用は、図45-48に示される。図45-48は、パルス波形497が、レーザービーム25および染色された精子細胞201の間の相互作用から得られる蛍光発光31によってどのように発生するかを示す。発光パルス497は、励起空間関数498および発光空間関数の重畳積分である。蛍光パルス波形497の特徴を使用して、細胞をX、Yまたは未定として分類する。１つの具体例において、X-Y識別は、２つのパルス特徴:ピークパルス高およびパルス面積に基づく。
これらの特徴は、図52および53に現れる例示パルス上に示される。図52および53は、X-担持およびY-担持精子細胞からのパルス497の例である。パルス497は、2μmガウスビームウエストW1(図6)を有する楕円形状ビームスポット459を有するレーザービーム25での励起照明を仮定し、およびDNA含有量差が細胞201の20パーセント中心を均一に横切って分布したコンピューターモデルから生じさせた。これらの仮定は、上記でより詳細に論議されたように、局所化されたDNA差を有するウシ精子細胞201のスリットスキャニング照明を表す。パルス497の統合によって、X細胞に対するパルス497領域およびY細胞に対するパルス497領域の間に、3.8%平均差が生じる。
パルス497ピークおよび染色された細胞および核に特徴的な領域のヒストグラムおよび分散プロットを生じさせることは可能である。図56-59は、染色された核および生細胞に特徴的なパルス面積をヒストグラムと、パルス497領域および染色された核および生細胞の分散プロットを含む。生細胞識別、および最終的に細胞仕分け率を制限し得る事項のいくつかは、これらのプロットにおいて明白である。注目すべきは、図57の生細胞ヒストグラム、およびそれほどではないにせよ図56の各ヒストグラムは、哺乳類の精子細胞についての蛍光強度ヒストグラムに典型的な左ショルダーを有する。左ショルダーは、僅かに不揃いな細胞(つまり、最適整列からの僅かな偏りにより比較的より弱い蛍光発光を生じ、光学システム109によって収集されるべき精子頭部の狭いエッジ205からの比較的より明るい蛍光発光31を引き起こすにはあまりにも不揃いというのはでない細胞)の１以上の集団によって生成されることが決定されている。X細胞のうちの約半分ほどのみが、生細胞領域ヒストグラムにおいて、容易に同定され得る。残りは、Y細胞集団および不揃いな細胞集団と重複する。図56-59の分散プロットにおいて示されるように、ピークパルス高が付加される場合でさえ、X-担持細胞分類が、有意に制限され得る。
図60-61は、XおよびY集団分布の重複を示す。図60-61において、４成分コンピューターモデルは、未加工データ6000(図60)に適用されて、並べられていない細胞(6001、6003)、並べられた生Y細胞(6005)および並べられた生X細胞(6007)(図61)の２つの集団に対して、集団統計を予測する。XおよびY集団の変動係数(CV)の関数として、XおよびY集団を識別するのが望ましい。例えば、識別を改善するために、XおよびY集団の変動係数(CV)を最小化するのが望ましい。特に、仕分けられたX細胞の集団が望ましい時、X細胞集団のCVが、1.5%未満、より望ましくは約1.3%、さらにより望ましくは1.3%未満であるのが望ましい。伝統的には、精子細胞の蛍光強度の分布のCVは、２つの集団(XおよびY)のみに対する分布関数に関して考えられている。CVに関する質制御は、XおよびY集団のCVの適当な主観的な予測に制限されて、継続した分析または仕分けに意味があるかを決定する。
本発明の１つの具体例に従い、マイクロプロセッサー131の１つの機能は、図60-61に示される４成分モデルを用いて、X集団のCVの自動予測を供することである。特徴(例えば、パルス面積)分布に存在する集団のCVを予測するために、集団分布の二次統計を予測することが必要である。これは、既知の形態のモデルを適用し、観察されたデータに対するそのモデルのベストフィットを見つけることによって達成され得る。
正規分布データの期待を仮定すると、(ガウス核（kernel)関数を用いる)パルツェン(Parzen)ウィンドウに基づく非パラメーター密度予測よりなるアプローチ、その後のガウス混合パラメーターモデルの適用が選択されている。具体的には、図60-61に示される４成分モデルは、これらの４成分は一変量ガウス分布の合計（または混合物）よりなり、並べられたX細胞、並べられたY細胞、および２成分の並べられていない細胞集団に対応する特徴分布である。次いで、モデルを特徴付けるパラメーターは、集団平均(平均)、集団標準偏差/分数(4)、および事前確率(全分布の期待%)(4)である。次いで、これらの12パラメーターを変動させて、観察されたデータヒストグラムに、モデルのベストフィットを達成することができる。従って、予測されたモデル成分パラメーターと共に、関心のある(特に、X細胞)集団のCVの予測は、予測された集団標準偏差および平均から決定され得る:
Figure 0004614947
計算の複雑性を減らすために、モデルに制限を課して、パラメーター空間の次元を減らしている。特に、並べられたXおよび並べられたY集団に対応するモデル成分の標準偏差は、同じとなるように制限されている。また、並べられたXおよび並べられたY成分は、全体の混合物と同一のパーセンテージを構成するように制限されている−すなわち、並べられていない集団は、50%X細胞および50%Y細胞と考えられる。
非パラメーター密度予測は、モデルフィティング前に適用されて、未加工のヒストグラムデータの根底にある（成分密度の合計である）総密度関数の改善された予測を得る。適用される特異的な技術は、「パルツェンウィンドウ」(Duda, Hart, and Stork, 2001)として知られ、ここに、根底にある密度の仮定されるガウス性質の合計によって、ガウス核またはウィンドウ関数を利用する。ガウス核の標準偏差は、存在するヒストグラムビンの数の1%であるように選択される;この値は、ヒストグラムの十分であるが過剰ではない平滑化を供すると、経験的に観察されている。そして、ヒストグラムにおける各データポイントは、データポイントを含有するヒストグラムビンを中心とする核関数を寄与する。次いで、密度予測は、核関数の合計として得られる。
データへのベストフィットを達成するための、モデルパラメーターの変動に選択される方法論は、期待値最大化として知られる(Duda R.O., Hart, P.E., and Stork, D.G., 2001, Pattern Classification 2nd Ed., John Wiley & Sons; and Moore, A., "Very Fast EM-based Mixture Model Clustering using Multiresolution kd-trees," in M. Kearns and D. Cohn, Eds., Advances in Neural Information Processing Systems, pages 543-549, 1999, Morgan Kaufman参照)。利用される特定のアルゴリズム実行は次の通りである:
1)モデルパラメーターに対する初期条件を設定する。パルツェン密度予測の上位２つの極大値は、初期のYおよびXの平均位置として使用される(XおよびY集団の両方に対する最大値の初期振幅は、右ピークの振幅として予測される)。初期XおよびY集団分散は、右ピーク位置に対する左および右ピークの間に生じる極小の右へのデータの分散として予測される。また、初期XおよびY集団事前確率は、この極小の右側となる全ての点のパーセンテージとして設定される。次いで、初期XおよびY集団ガウス密度予測は、これらのパラメーターを用いて計算され、総パルツェン密度予測から差し引かれる。次いで、残りのデータポイントの平均および分散を計算し、次のように、２成分の並んでいない集団モデルを初期設定するのに使用する。２つの集団平均は、5%(並べられていない全平均の上下2.5%)離れていると(任意に)仮定される。同等の事前確率および同等の分数の（初期）仮定を前提とすると、成分分散は：
Figure 0004614947
 ［ここに、σ2は分散であり、μはそれぞれの集団の平均である］によって与えられる。
2)成分集団統計(平均、標準偏差、および事前確率)のアップデートされた予測は、パルツェン密度予測を用いて計算される。各ヒストグラムビン位置は、該ビンにおけるパルツェン密度予測によって、統計計算において重み付けされる。加えて、各データポイントは、現在の成分集団パラメーターに基づいて、該点が所与の集団に属すると考えられている程度によって、全成分集団統計計算に寄与する。メンバーシップのこの程度は、データポイントでの全成分集団確率密度の合計に対する所与の成分集団(ガウス)確率密度値の割合として決定される。従って、我々は（ヒストグラム中の全てのデータ点, 集団 cp∈{cx,cy,cu}、および集団パラメーターベクトルθp=[μp,σp,Pp])につき、:
Figure 0004614947
 でよって与えられるアップデートされたパラメーター予測値の計算で用いられる集団成分メンバーシップを有する。
次いで、全てのデータ点にわたり各成分集団につき平均メンバーシップによって与えられるアップデートされた事前確率と共に、これらのメンバーシップ値によって重み付けられたパルツェン密度予測値を用いてアップデートされた平均および分散が計算される。
3)パラメーターアップデート手順は、全パラメーターが、定常状態に達する(つまり、１つのアップデート反復から次のアップデート反復で有意に変化するのを停止する（または最大許容数の反復が起こる）まで続ける。
先述のように、並べられたXおよびY集団は、同一の分散および事前確率を有するにはこの手順に制限される。この制限は、各反復にて上記手順を介して計算されたXおよびY分散の平均および事前値を用いることによって達成される。
別法として、同様のモデリングアプローチは、３成分モデル(図62-63)に適用することができ、ここに４成分モデル中に２つの並べられていない集団6001、6003を含む細胞は、２つの異なるサブ集団よりむしろ単一のガウス分布6011として処理される。並んでいない細胞は、(図62に示される)未加工データ6010の左ショルダーおよび左ピークのベストフィットによって決定される平均および標準偏差を有する(図63に示される)第３のガウス分布としてモデル化することができる。また、３集団モデルは、並べられたY集団6015および並べられたX集団6017に対する予測された統計を有する。３成分モデルの１つの利点は、(４成分モデルに必要な１２次元パラメーター空間と比較して)それが９次元パラメーター空間しか必要としない点である。しかしながら、４成分モデルは、典型的には、未加工データにより近くマッチする予測された密度関数を生じることが分かっている。
多種多様な統計技術を用いて、並べられたXおよび並べられたY集団の特徴を予測することができることを、当業者は認識するだろう。従って、４成分モデル、３成分モデル、または他のモデルは、いずれかのパラメーターまたは非パラメーターコンピューターアルゴリズムによって実行されて、本発明の範囲から逸脱せずに、並べられたX細胞および／または並べられたY細胞集団の特徴を予測してもよい。
L.染色条件のCVベースの選択
いくつかの要因は、細胞の豊富化されたサブ集団に、集団内の染色された細胞を仕分ける効率に影響する。これらの要因のなかには、染色された集団内の細胞の様々なサブ集団の間の微分蛍光の量がある。微分蛍光は色素摂取によって影響され、これは、例えば、染色の濃度、染色時間の長さ、染色が起こる温度、および染色と含まれ得るまたは染色混合物に添加され得るいずれかの添加剤の数および濃度といった染色要因によって変動する。従って、これらの要因のいずれかまたは全てに調整がなされて、染色された細胞の集団の仕分け効率(純度および／または所望の細胞の最小の喪失の特定の程度で、細胞が細胞の少なくとも１つの豊富化されたサブ集団に仕分けられ得る速度)を増加してもよい。さらに、各試料につき、１以上のこれらの要因を調整することによって、マルチ試料仕分けシステムの効率を増加し、それにより、いずれかの試料対試料変動に対抗することができる。例えば、ウシ精子仕分けの関連で、仕分け効率は、１つの精液試料から次の精液試料へとこれまでの染色要因を調整して、雄ウシ間の変動または同一の試料内での試料間の変動に対抗することによって改良することができる。
仕分けられる細胞の集団の所与の蛍光発光特徴に対する変動係数(「CV」)の決定は、染色条件への調整が、所望の仕分け効率を達成するためになされるかを決定する１つの様式である。例えば、(総蛍光強度およびピーク蛍光強度を含む)総蛍光強度またはピーク蛍光強度を示すいずれかの特徴のような、問い合わせ位置を通る細胞の動きによって生じるパルス波形から抽出されるいずれかの特徴のCVの関数として、染色条件を調整してもよい。より詳細に先に論議したように、CVは、例えば、所与の集団の特定のサブ集団の蛍光発光特徴のような、集団の測定可能な特性または特徴の分布の均一性または一定性の指標である。CVは、試料平均によって、試料の測定された特徴の標準偏差を割ることによって決定されてもよい。また、CVは、上記で詳細に論議された反復のCV予測アルゴリズムの実施のように、フローサイトメトリーシステム9によって、自動的に決定することができる。CVが低ければ低いほど、測定された特徴の分布の均一性または一定性は大きい。
精子細胞の染色および分離に適用されるように、精子細胞を有するXおよびY染色体の試料の特定の蛍光発光特徴のCVは、染色条件によって影響され得る。染色の濃度、染色時間の長さ、染色混合物の温度、および／また添加剤の数および濃度は、所与の蛍光発光特徴のCVに影響を与える。染色の濃度、染色時間の長さ、および染色混合物の温度を増加するおよび／または添加剤の数および濃度を減少することによって、徐々にCVが低下するだろう。そのような条件は、個々にまたは組合せで改変され得る。加えて、もしこれらの要因のうちのいずれか１つが、例えば、染色時間を短くすることによって、蛍光発光特徴のCVを増加する傾向があるようならば、いずれか１以上の他の条件は、例えば、色素濃度を増加させることによるなどして、それが最初の効果に反対に作用するように調整することができ、総じての結果は、所望の仕分け効果を達成するのに十分なレベルまでの蛍光発光特徴のCVの減少である。従って、この様式で、これらの要因のいずれか１またはいずれかの組合せを操作することによって、XおよびY染色体を有する集団の蛍光発光特徴のCVは、所望のパーセント純度のX染色体担持細胞を含む性豊富化された精液のサブ集団への精子試料の仕分けが可能な値へと減少され得る。
残念ながら、精子を有するXのCVを低下する傾向のある変化は、増加されたコストまたは減少された精子運動性または受精率のような負の結果をもたらし得る。例えば、他の条件が同じなら、より低い染色濃度およびより短い染色時間を用いて、精子に対する染色プロセスのいずれかの有害な影響を最小化するのが望ましい。この点を考慮して、許容される仕分け効率が達成されるCVを予め決定してもよい。その後、仕分けられる細胞試料の画分は染色され、フローサイトメトリー分析に付される。画分の蛍光発光特徴は決定され、画分は、特徴に基づき、サブ集団に分類される。蛍光特徴のCVは、サブ集団(豊富化されたサブ集団)のうちの１つの細胞に関して、決定される。豊富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特徴のCVが、仕分けが起こる所定のCVと同等またはそれ未満であれば、細胞試料の残部は、画分は染色された条件に従って染色される。その後、試料は、例えば、本明細書に開示された方法に従って、仕分けられる。豊富化されたサブ集団の細胞の特定の蛍光発光特徴のCVが、仕分けが起こる所定のCVより大きければ、同一の試料のもう一方の画分が、同様の様式であるが、さらにより低いCVを達成すると考えられる染色条件下で、分析される。そのような状況において、CVは、例えば、染色時間の長さを増加する、色素の濃度を増加する、画分が染色される温度を増加する、またはそのいずれかの組合せによって低下させてもよい。この一連の工程(つまり、仕分けられる試料からの画分の除去、染色条件の調整、およびCVの決定)を、豊富化されたサブ集団の細胞の特定の蛍光発光特徴のCVが所定のCVと同等またはそれ未満であると決定されるまで繰り返す。その後、試料の残部は、適宜に染色され、例えば、本明細書に開示された方法に従い、仕分けられてもよい。本発明の特定の具体例において、細胞試料は、精液試料を含み、豊富化されたサブ集団の細胞は精子細胞を有するX染色体を含む。
従って、本発明の１つの具体例は、仕分け用の細胞の集団を染色するための一組の条件を評価するためのプロセスであり、該集団は、細胞の第１のタイプおよび第２のタイプを含む。プロセスは、(a)細胞の集団の画分を、一組の染色条件下で、蛍光色素によって染色し;(b)染色された細胞が速度Rにて、フローサイトメーターの問い合わせ位置を通過する時に、染色された細胞を電磁放射線に暴露し;(c)暴露された細胞の蛍光発光特徴を決定し;(d)決定された蛍光特徴を用いて、細胞を２以上のサブ集団に分類し、ここにサブ集団のうちの１つは第１の細胞タイプの豊富化されたサブ集団であり;(e)豊富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特徴に対して変動係数を決定し;次いで(f)細胞が染色されるいずれかの染色条件または染色された細胞がフローサイトメーターの問い合わせ位置を通過する速度Rを修飾するか否かを決定することを特徴とする。もう１つの具体例において、細胞の集団のもう１つの画分は、異なる組の染色条件下で染色され、工程(b)から(e)は、該画分と共に繰り返される。このプロセスは、２、３、４またはいずれかの数のさらなる画分に対して行われてもよい。もう１つの具体例において、細胞の複数の画分が同時に試料から採られる。各画分は、同時に染色されてもよく、あるいは各々は、フローサイトメーターを通過する先の画分に続いて染色されてもよい。前者の場合、各画分は、染色条件のその独特の組で染色されてもよく、工程(f)は、それぞれのCVを用いることを特徴として、さらなる細胞を染色するのに使用される１組の染色条件を決定してもよい。後者の例において、続いて染色された画分の染色条件は、予め分析された画分に関する工程(f)によって改変されてもよい。１つの具体例において、プロセスは、CVが特定のCVとほぼ同等またはそれ未満(例えば、1.3%)であると決定されるまで繰り返される。
別法として、一旦許容される仕分け効率が達成されるCVを予め決定すると、全細胞試料は染色されてもよい。細胞試料の画分は除去され、フローサイトメトリー分析に付される。画分の蛍光発光特徴は決定され、細胞を２以上のサブ集団に分類するのに使用される。蛍光特徴のCVは、豊富化されたサブ集団の細胞に関して決定される。もし豊富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特徴のCVが、仕分けが起こる所定のCVと同等またはそれ未満であれば、細胞試料の残りはその後仕分けられる。もし豊富化されたサブ集団の細胞の特定の蛍光発光特徴のCVが、仕分けが起こる所定のCVより大きければ、同一の試料からの第２の画分は、同様の様式で分析され、同一の蛍光特徴のCVが決定される。第２の画分のCVは、例えば、染色時間の長さを増加する、色素の濃度を増加する、あるいはそのいずれかの組合せによって低下されてもよい。この一連の工程(つまり、仕分けられる試料からの画分の除去およびCVの決定)は、豊富化されたサブ集団の細胞の特定の蛍光発光特徴のCVが、所定のCVと同等またはそれ未満であると決定されるまで繰り返される。その後、試料の残りは、例えば、本明細書に開示された方法に従い、仕分けられてもよい。本発明の特定の具体例において、細胞試料は、精液試料を含み、豊富化されたサブ集団の細胞はX染色体を有する細胞を含む。
従って、本発明のもう１つの具体例は、仕分け用の細胞の集団を染色するための１組の条件を評価するためのプロセスであり、ここに、集団は、細胞の第１のタイプおよび第２のタイプを含む。プロセスは、(a)１組の染色条件下で、蛍光色素で、細胞の集団の画分を染色し;(b)染色された細胞が、速度、Rにて、フローサイトメーターの問い合わせ位置を通過する時に、染色された細胞を電磁放射線に暴露し;(c)暴露された細胞の蛍光発光特徴を決定し;(d)決定された蛍光発光特徴を用いて、細胞を２以上のサブ集団に分類し、ここにサブ集団のうちの１つは、第１の細胞タイプの豊富化されたサブ集団であり;(e)豊富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特徴に対する変動係数を決定し;(f)細胞の画分が染色されるいずれかの染色条件または、染色された細胞がフローサイトメーターの問い合わせ位置を通過する速度Rを修飾するかを決定し;次いで(g)修飾された染色条件を、細胞の集団の残りに適用することを特徴とする。もう１つの具体例において、工程(a)から(f)は、細胞の集団の少なくとも１つの他の画分によって、少なくとも一度繰り返される。工程(a)から(f)は、一度、二度、三度、四度またはより多くの回数繰り返されても良い。もう１つの具体例において、細胞の複数の画分は、同時に、試料から採られる。各試料は、同時に染色されてもよく、あるいは各々は、フローサイトメーターを通過する先の画分に続いて染色されてもよい。後者の例において、画分の続いての染色は、先に分析されたものに関する工程(f)の決定に従い改変され得る。さらにもう１つの具体例において、プロセスは、さらに、工程(g)の前に、蛍光発光特徴についての最低変動係数を生じる修飾された染色条件を選択することを特徴とする。さらにもう１つの具体例において、プロセスは、画分の少なくとも１つの蛍光発光特徴に対する変動係数が、約1.3%またはそれ未満になるまで、反復工程(a)から(e)を含む。本発明のもう１つの具体例において、プロセスは、さらに、工程(g)の前に、約1.3%またはそれ未満の変動係数を生じる修飾された染色条件を選択することを特徴とする。
上記のように、全試料を仕分ける前にそのような分析を実施することに加えて、同様の分析が、仕分け効率が維持されることを確証するために、試料の染色および仕分けが起こっている間、実施されてもよい。従って、もう１つの具体例において、一部が仕分けられるプロセスにある予め染色されている試料の画分の豊富化されたサブ集団の細胞の光発光特徴のCVは上記のとおり決定される。これらの試料が染色される染色条件への調整は、仕分け前調整に関して、上記で論議された方法に従って行われる。
許容される仕分け効率が達成されるであろう所定のCVの選択は、例えば、集団の豊富化されたサブ集団への仕分けに関して望まれる仕分けられる細胞のタイプ、仕分けの速度、および純度の程度を含めたいくつかの要因に基づく。一般的には、CVは、例えば、染色期間の長さを最小化しつつ豊富化されたサブ集団の85%純度を達成することなどによって、それを達成するのに必要な時間の量を最小化しつつ、豊富化されたサブ集団の所望のパーセント純度まで仕分けるのを可能とするように選択される。これらの要因を考慮して、豊富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特徴のCVは、一般的には、約2.0%および約1.0%の間であり、好ましくは約1.5%および約1.0%の間、より好ましくは約1.4%、さらにより好ましくは約1.3%である。
M.限界勾配差特徴抽出
細胞仕分け器の一部として使用される図40に示されるデジタルシグナル処理(DSP)を備えたマイクロプロセッサー131'は、時間分解蛍光発光パルスの特徴、特にアナログ技術を用いて容易にまたは安価に入手できない特徴を抽出することを可能にする。特に、非線状特性を呈し、分離すなわち粒子AおよびBの解像度を有意に改善する(例えば、生きている並べられたX精子細胞の識別を改善する)パルス特徴は、臨界勾配差(CSD)と呼ばれる特徴である。CSDは、粒子A(例えば、X-担持細胞)によって生成されたパルスの第１の微分および粒子B(例えば、Y-担持細胞)によって生成されたパルスの第１の微分の差が最大に近づくシグナル振幅での、蛍光発光パルスの傾きの定量化である。
蛍光発光パルスを記載する関数は、時間の関数:y=x(t)として、シグナル振幅換算で表現され得る。CSD特徴を検出する状況内では、関数は、シグナル振幅の関数として、パルス持続時間の観点で、蛍光発光パルスを記載するものと定義され得る。この関数は、M関数と呼ぶことができる。M関数は、下記のように、蛍光発光パルス関数を置き換えられてもよい。
蛍光発光パルス関数:y=x(t)
M関数:t=M(y)
t=パルス持続
y=シグナル振幅
典型的なXおよびYウシ精子細胞に対するM関数の比較は、CSD特徴の識別力を示す。図64の上部パネルは、X-担持およびY-担持精子細胞に対する平均的なMプロットを示す。図64の中部パネルは、平均的なY-担持 蛍光発光パルスのピーク高より小さいシグナル振幅値に対するこれらの平均的なMプロット(つまり、M')の第１の微分のグラフを示す。シグナル振幅がY-担持パルスの平均的なピーク高に近づくにつれ、第１の微分(M'YおよびM'X)の間の差が有意に増加することが、このプロットにおいて分かる。シグナル振幅の関数としての第１の微分(M'XM'Y)の間の差が、図64の下部パネルにプロットされる。CSD特徴は、第１の微分における最大の差が生じる領域の近くの個々のパルスに対するM(M')の傾き(または、蛍光発光パルス関数上の対応する点での傾き)を定量化する。XおよびY担持精子細胞を識別する目的のために、CSDは、図62-63に示されるように、パルスの前部エッジがCSD閾値と交差する点にて、各パルスを決定する。いくつかの具体例において、CSDは、ビームが断続的かパルスかに拘わらず、ビーム幅のような照明ビームの特徴によって決まってもよい。CSDを決定するアルゴリズムは、図65に関して、下記で論議される。
図64は、いくつかのケースにおいて、CSD特徴は、X-Y精子細胞集団を仕分けるケースにおいてのような、非線状性質を有することを示す。微分(M'XM'Y)の間の差は、CSD閾値がYパルスのピークに近づくにつれ増加する。この差の非線状特徴は、並べられていないおよび並べられたY細胞の平均値を、CSD特徴空間の並べられたX細胞の平均値より45%低く置く。並べられたX細胞のCSD特徴空間の標準偏差は、概ね影響がない(つまり、ピークまたは領域特徴空間で見られるものと同様)。正確に識別することができる並べられたX細胞の数を増加するのは、CSD特徴のこの非線状、高利得性質である。
所与のパルスに対するCSD値を決定する１つの計算的に効率的な方法は、図65に示される。CSD閾値は、蛍光発光パルスのピーク高の関数として決定されてもよい。特に、蛍光発光パルスの平均的なピーク高に基づき決定されてもよい。CSD閾値は、生きた、並べられた細胞からのパルスピークの約25%が閾値またはそれ以下である点で維持される。従って、CSD閾値は、連続的ピーク高分布に基づく(つまり、平均的なピーク高に対する)仕分けの間に動的に調整される。例えば、閾値は、ピーク高分布の重み付けしたランニング平均に基づくことができる(より最近の測定はより古い測定よりも大きな重量が与えられている)。CSD値は、パルス上の２つの点を通過する線の傾きである。これらの点は、CSDパルス閾値およびパルスピークである。従って、この具体例において、CSD値は、パルスの前部エッジおよびCSD閾値の交差でのパルス波形497の傾きの単なる近似である。しかしながら、所与のパルスに対するCSD値を計算する他の方法は、すぐに明白であり、そのうちのいくつかは、所望により、より正確なCSDを供することができる。
もう１つの具体例において、CSD閾値は、粒子のサブ集団に対するCSD特徴抽出のCVの関数として、動的に調整される。例えば、比較的低いレベル(例えば、パルス検出閾値)からのCSD閾値を増加させることによって、精子細胞を仕分ける場合、CSD閾値は、Y細胞のCSDのCVの実質的な増加を生むが、まだ、X細胞に対するCSDのCVの増加が、Y細胞のCV増加と比較して有意に低いほど低くはない。この効果は、全体的なCSD分布における１つのサブ集団からのファニングアウトとして、CSD分布において観察することができる。CSD特徴からの良い識別は、CSD閾値をこのレベルに維持することによって達成できる。
CSD特徴の識別力は、フローサイトメトリーへのスリットスキャニングアプローチの使用によって高められることに注意するべきである。ビームスポット459の形状は、パルス波形497の形状に影響を及ぼし得る。例えば、比較的小さい幅W1を有するビームスポット459を使用することによって、試料粒子中の局所化蛍光差(例えば、精子核213の中心領域225におけるXまたはY染色体の局所化から得られる局所化蛍光強度差)は、パルス波形の一階微分に対してより大きい影響を有する。従って、本発明の１つの具体例は、CSD特徴抽出と併せて、スリットスキャニング技術を用いることを含む。反対に、大きすぎる(例えば、粒子の直径と同等またはより大きい)ビームウエストを有するレーザーを用いることで、粒子を識別するためのCSD特徴の効果的な使用が妨げられるかもしれない。フォーカスされた照明ビームのビームウエストの幅の許容される範囲は、粒子のサイズおよび形状、分析される粒子内の色素の分布、および識別される粒子に対する典型的な波形パルスの間の差の量を含む多くの要因によって決まるだろう。精子細胞の場合、3μm未満のビームウエストを有するレーザーを有するウシ精子細胞201の励起によって生じる波形パルス497からのCSD特徴抽出は、下記されるのと同様に首尾よく行われた。もちろん、スリットスキャニングセクションで論議されるスリットスキャニングのいずれかの形態を有するCSD特徴抽出は、発明の本態様の範囲内であると考えられる。
より多くの並べられたX細胞の収集を可能にするため、特にX-Y精子細胞集団を仕分ける場合、CSD特徴の使用は、実質的に、システムの収率を増加する。ピーク対領域または上昇時間対領域特徴空間で規定された集団の重複のため、並べられたX細胞の約70%以下は、約85%またはそれ未満で、確実に識別され得る。CSD特徴が使用される時、95%以上の並べられたX細胞は識別され得、純度の所望のレベル以下の収集されたX細胞の集団の純度を減少させずに収集することができる生X細胞のパーセンテージを有意に増加する。
これは、図66-69に示される生細胞データで、グラフ的に見られる。CSD特徴の非線形性質によって、X細胞を、仕分けのために単離することができる。図68に示される分散図で適用されるCSDに対する肉眼での選択は、70%純粋なX領域集団を生じる。二変量仕分け識別が領域およびCSD特徴空間に適用されると(図68)、並べられたX細胞の>95%は、仕分けのために識別され得る。図66-69のデータは、４チャネルサイトメトリーシステム(下記のマルチチャネルシステム論議参照)のうちの１つのチャネル上の約22,000生細胞／秒の総細胞スループットにて収集された。同時発生検出が可能だとしても(高純度)、6,000X細胞／秒以上が少なくとも85%純度の純度レベルにて、収集された。
図66-69は、X-担持およびY-担持精子細胞を識別するのに使用される時のCSD特徴の１つの利点を示す。図66および67は、図68および69に示される分散図で定義された特徴空間に対する蛍光発光パルスの領域特徴のヒストグラムである。図68において、CSD特徴は、並べられていないおよび並べられたY細胞のほとんどを分散図のディスプレイから動かしている。これによって、分散図のフレーム中の70%純粋なX集団が残り、これが図66のパルス面積ヒストグラムに示されるものである。非-CSD識別は、図69に示されたパルス面積/上昇時間分散図に示される。並べられたX細胞は、対応する領域ヒストグラム(図67)の約30%を構成する。95%以上の並べられたX細胞は、識別のためにCSD特徴を用いて、>85%純度にて収集され得る。比較すると、70%未満の並べられたX細胞は、右側の慣用的特徴空間を用いて識別され得る。
いくつかの生細胞仕分けは、CSD対パルス面積、二変量識別技術を用いて完成している。図70は、この二次元特徴空間に設定された仕分け領域を使用して、並べられていない細胞およびY細胞を排除する方法の例である。図70は、CSD対パルス面積分散の分散図に設定された二変量仕分け領域を示す。どのように、仕分け領域が、CSDの高値に対する領域特徴上でより低く落ち(CSDは左から右に増加し、領域は下から上に増加する)、CSDがより低い値に落ちるにつれ、領域特徴上でより高く動くかに留意されたい。上記のCSD対パルス面積分散図上の二変量仕分け領域組を使用して、26,000細胞／秒のインプット生細胞速度で、仕分け決定速度>6000X細胞／秒にて、X細胞を仕分けた。フローサイトメトリー分析に基づく純度は、87%であった。
CSD特徴は、高収率、非-同時発生打切(つまり、同時発生受入または高回収)仕分け方法を可能にする。いくつかの具体例において、パルス特徴はほぼベースライン分離を供し、従って、生XおよびY精子細胞の100%正確な分類を供し得る。この状態は、Xおよび非-X(未知またはYのいずれか)として分類される細胞の両方を含有する液滴を停止せずに、適度に高い速度にて、細胞を仕分けることを可能にするだろう。この仕分け方法は、高回収または同時発生受入方法と呼ばれる。実験を実施して、CSD特徴を用いてこれをテストした。同時発生受入仕分けは、４チャネルフローサイトメーターの１つのチャネル上で、12,000生X細胞／秒のインプット速度で実施した。X細胞の77%は適切に並べられ、4,600X細胞／秒を仕分けに潜在的に入手可能にした。これらの状況下で、4,300細胞／秒をX細胞の集団に仕分けた。続いての純度分析は、死滅細胞についての修正なくして> 87%、および死滅細胞についての修正を施して89%のこの仕分けからの純度を示した。高純度、同時発生拒否検出仕分けは、同一条件下で、この仕分け直後に行われた。3200-3500細胞／秒の収集速度が観察された。純度分析は、死滅細胞についての修正なくして92%の純度、および死滅細胞修正を施して94%の純度を示した。
上記実験の結果は、12,000生細胞／秒インプットにて、並べられたX細胞の>92%が、純度>85%にて収集され得ることを示す。これは、CSD特徴が、全ての並べられたX細胞の95%正確な分類を供することを示す。これらの状況下で、セルソーターからの収率は、主に正しい細胞の並びによって制限される。
図71は、左パネルが高回収／同時発生受入仕分け戦略（同時発生打切戦略無し）に対応し、右パネルは高純度／同時発生拒否仕分け戦略（同時発生打切戦略）に対応するテストのためのフローサイトメトリー再分析の１つの具体例を示す。左パネル(87%純粋)は、同時発生打切なしで、4,400X細胞／秒のアウトプットに対するものであった。右パネルは、汚染細胞を含有する液滴が捨てられる以外は同一条件下で完了された仕分けからのものであった。この仕分けに対する純度は約92%であった。これらの仕分けは、高回収、同時発生打切無し仕分けは、CSD特徴が識別に対して使用されるとき可能であることを示す。
CSD特徴の使用は、精子細胞の仕分けまたは精子細胞のいずれかの特定の種に制限されない。当業者が前述の開示から理解するように、CSD特徴は、差の原因に拘わらず、異なる一次微分特徴を有するシグナルパルスを発生するいずれかの群の粒子の間の識別を改善するように適合され得る。
N.識別
一旦、パルスの特徴がパルス分析ソフトウェア749によって抽出されると、
パルスの識別(例えば、分類)は、ベイズ最小リスク（Bayes Minimum Risk）決定則のようなロジック適用を用いるプロセッサー867によって実行されるパルス識別ソフトウェア757によって達成される。この規則は、異なる間違った分類(例えば、識別)決定を下すことと関連した異なるコスト（に対する調整）割り当てを可能にするベイズ最小誤差（Bayes Minimum Error）決定則の修飾である。
ベイズ最小誤差（Bayes Minimum Error）は、特徴空間における集団の間の同等の事後確率の表面として、決定境界763または決定表面を計算する。(推定)ガウス確率分布の場合につき、この表面は、特定の条件では線状であってもよいが（あるいは超平面により非常に近似される得る）、一般的には二次である。分類(例えば、識別)決定は、まず(一般的に、クラス条件的確率密度およびベイズ則を用いる既知/仮定推測集団確率からの)特徴空間における所与のポイントに対する事後確率を計算し、次いで最高の事後確率を有する集団のものとして、クラス標識を選択することによってなされる。
ベイズ最小リスクは、異なる分類誤差(例えば、「Y」細胞を「X」細胞として分類する方がその逆の場合よりも高価かもしれない)を作るのに異なるコストを割り当てるのが望まれる場合、決定境界763の調整を可能にするための要因を含む。この適用において、これによって、仕分けられた試料の純度および回収の間の交換が可能になる。この決定規則において、各可能なクラス標識を特徴空間におけるポイントに割り当てる「リスク」は、各他の集団における真のメンバーシップを仮定すると現在の集団として分類されるに関するコストに、各集団におけるメンバーシップの事後確率を乗じたものの総和として計算される。表6は、ベイズ最小誤差分類の手順を要約する。多変量ガウス密度については、事後確率を得るためのベイズ則の評価は、W、w、およびwoが表3に与えられた識別アルゴリズムパラメーター初期設定において計算されると仮定すれば、表VIIに見られる二次関数の評価に帰結することができる。図74は、この手順による分類のグラフ的例を示す。左の図は、２つの集団1および2および集団を分離する決定境界763の略図である。右側のヒストグラムは、XおよびY領域を規定する楕円の２つの同心組を示し、決定境界763は楕円の交差によって規定された線である。
Figure 0004614947
 さらなる頑健性のために、デジタル蛍光パルスの分類において、さらなる工程をとる。ベイズ最小誤差を介して割り当てられる集団からの特徴空間のパルスのマハラノビス距離が計算され、もし閾値より大きければ、パルスは「分類されず」またはそれがいずれかの既知の集団の一員ではないようであるという何らかの他の適当な表示として標識される。図75は、デジタル的に得られた蛍光パルスデータから計算される特徴を再び用いて、このさらなる工程の効果を示す。
一般的に、A/D変換器689は、光検出器117からのアナログアウトプットシグナル701を、特徴Aまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標である対応するデジタル情報707へと変換する。デジタルシグナルプロセッサー865は、デジタル情報から特徴を抽出し、プロセッサー873は、抽出された特徴の関数として、仕分けシステムに、仕分けシグナル853を提供する。
O.仕分け分類および液滴同期化
第４の、仕分けプロセッサー873は、液滴分類を管理し、仕分け方法を使用し、仕分けのために選択された液滴と同期化される仕分けトリガーパルス853を送達する。このプロセッサー873は、識別プロセッサー867からの細胞分類情報を受け取り、該情報を液滴生成クロック703に関連させる(つまり、液滴の形成でもって集団に仕分けるのに分類された粒子の位置を並べる)。それは、液滴内で同時発生があるかを決定し、予め決定された仕分け方法に基づき、その同時発生を管理する。それは、粒子がリアルタイムで観察された時および粒子が最後に結合された液滴に到着する時の間の正しい遅延を設定する全細胞分類および液滴仕分け決定のFIFOを維持する。仕分けのための選択された各液滴に対する適切な極性および振幅の適切なタイミングのアウトプットパルス853を生成するであろう。
一般的に、A/D変換器689は、アナログアウトプットシグナル701を、光検出器117から特徴Aまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標である対応するデジタル情報707へと変換する。デジタルシグナルプロセッサー867は、特徴Aの指標としてまたは特徴B(例えば、Xまたは〜X)の指標として、デジタル情報707を識別し、仕分けシグナル853を、仕分けシステム119に、識別されたデジタル情報の関数として供する。
一般的に、デジタルシグナルプロセッサー863、865、867、873は、デジタル情報によって表される波形パルスを検出する指令、検出されたパルス中の特徴を抽出するための指令およびそれらの抽出された特徴の関数として、検出されたパルスを識別するための指令を含む。加えて、プロセッサーは、特徴Aを表す抽出された特徴および特徴Bを表す抽出された特徴の間を識別する決定境界763を規定するための指令を含む。さらに、プロセッサー863、865、867、873は、所望により、次:(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関して、少なくとも１つの集団の純度、および(2)流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する少なくとも１つの集団中の特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として、特徴Aを表す抽出された特徴Aに関しておよび特徴Bを表す抽出された特徴に関して、決定境界763の相対的位置を調整してもよい。例えば、プロセッサーは、特定の試料のアウトプットに基づきまたは所望のアウトプットに基づき(例えば、ベイズ最小リスク 決定規則に関して上記のように、異なるコストにつき、決定境界を調整する)、集団1をより少なく、集団2をより多く、あるいはその反対を含むように、決定境界763を動かしてもよい。
P.ドリフト補償
もし、経時的に、蛍光発光に対応する波形パルスが、(例えば、染色変動、温度変化、試料年齢および／または他の要因のため)変動すれば、または経時的にドリフトを呈すれば、システムは、所望により、ドリフトのいずれかの効果を補填するように変動する動的閾値を規定するドリフト分析ソフトウェア761(図72)を使用することもできる。特に、ソフトウェア747によって使用されるパルス検出閾値は、シグナルバックグラウンド特徴におけるいずれかの緩い変動に対して調整され得、ソフトウェア757の識別アルゴリズムは、特徴空間における集団のいずれかのドリフトの要因となる決定境界763(図74)を調整することができる。
パルス検出ソフトウェア747によって使用される（複数の）アルゴリズムの場合、ドリフト補償ソフトウェア761は、現在の試料で終了する。与えられた長さの試料(例えば、10-100試料)の移動ウィンドウ内で計算された試料統計予測に基づいてバックグラウンドの平均および標準偏差予測をアップデート更新することによってドリフト補償を達成することができる。データ獲得頻度に対する遅い（推定）ドリフト速度を仮定すると、バックグラウンド統計は、試料ごとにアップデートされる必要はない;むしろ、バックグラウンド統計アップデートは、定期的に起こってもよい(例えば、6秒おき;参照文字795および図82参照)。加えて、ウィンドウは、統計計算において、「忘却」速度が、より新しい試料に対してより古い試料の重み付けを外すことができるように、単位未満の重み付けを含むことができる。「忘却」速度なくして、あるいはそれを用いての、移動ウィンドウ内での統計（平均）計算の概念を示す。
検出アルゴリズムドリフト補償と同様、パルス識別ソフトウェア757によって使用される（複数の）識別アルゴリズムは、特徴空間の集団の二次統計の定期的なアップデートによってドリフト補償を達成する。しかしながら、この場合、所与の集団に割り当てられるパルスからのそれらの特徴値のみを使用して、該集団の統計学をアップデートする。再び、非-単位重み付けを使用して、「忘却」速度を含んでもよい。図77は、特徴空間における集団にこの技術を適用する効果の概念図を示す。図77は、特徴空間における集団統計学に対するドリフト補償の例を示す。黄色は集団1(X)を示し、緑色は集団2(Y)を示し、菱形は（ドリフトの誇張表示を伴う）クラス平均予測を示し、ブロックは一定シグマ楕円の変形に反映された集団共分散予測の変化を矢印で示す。
一般的に、デジタルシグナルプロセッサー863は、デジタル情報を分析するのに検出閾値を使用し、この閾値は、現在の試料で終わる試料のムービングウィンドウ内で計算されたサンプルされた時変アウトプットシグナルのバックグラウンド平均予測値および標準偏差の関数である。
Q.全デジタルの利点
アナログ技術を超える技術
全デジタルシステムを仕分けに使用する主な利点の１つは、パルスの検出および分析と関連した「不感時間」がないことである。アナログシステムでは、
パルスの発生および検出後リセットするための電子工学に必要である有限な「スイッチング時間」が常にある。この時間は、通常、約少なくとも１マイクロ秒である。デジタルシステムは、連続した流れを捕らえるため、実質的に不感時間がない。
デジタルシステムのもう１つの利点は、仕分けのために分類されたパルスの回りで早めに前方および後方を見る能力である。一般的に、デジタルシグナル処理は、分析に約５液滴時間を要する。好ましくは、液滴照明115および液滴形成107の間の時間遅延は、約７液滴時間である。これは、特定の粒子の特徴によって示されるように使用可能な集団をそれが汚染するであろう確率に基づいて、かつもう１つの分類された粒子に対する特定の粒子の近接性も基づいて、システムが特定の粒子を分類するのを可能とする。一例として、仕分けプロセッサー873は、生X細胞である50%確率を有すると見える粒子を拒否することができ、他方、仕分けプロセッサー873は、当該粒子が、生X細胞である95%確率を有すると見える第２の粒子と一致する場合、生X細胞である50%確率を有すると見える粒子を受け入れることができる。
R.アナログ細胞分析
また、光検出器からの時変アウトプットシグナルは、デジタル細胞アナライザーより安価であり得るフィールドプログラマブルゲートアレイのようなアナログ回路819によって処理されてもよいと考えられる。図42は、本発明に従い、システムの一部として使用され得るアナログ細胞アナライザーの１つの具体例の構成図である。図53は、アナログ分析をグラフで示す。閾値は、パルス高に基づき、トリガーを生成するように設定される。閾値は、アナログ積分器が電荷を蓄積するのをゲート制御する積分ウィンドウを開ける。ウィンドウは、固定された時間またはパルス振幅がトリガー閾値を下回るまでのいずれか開いたままである。このように、積分ウィンドウ内のパルスの部分の領域のみが、相対的蛍光測定に使用される。
図42を参照して、光検出器117のアウトプット701は、液滴クロック703と同期して、アウトプットシグナル701を積分する積分器825に供される。積分シグナルは、パルスを規定する閾値レベルに対して積分シグナルのレベルを比較するためのは幅/面積コンパレータ827に供される（例えば、パルスはある閾値の40%でもって積分シグナルと定義することができる）。動的閾値計算器829は、積分シグナル／レベルをモニターし、それが、幅/面積コンパレーターが用いる閾値レベルを、平均積分シグナル／レベルの変動の関数として変動させる点で、前記ドリフト補償と同様に機能する。
パルス識別されたシグナルは、ウィンドウコンパレータ837に供されて、パルス面積が許容される範囲内であることを確認する。また、Tパルス識別されたシグナルは、パルス幅およびトリガーロジック回路839に供されて、パルス幅が許容される範囲内であることを確認する。もし領域および幅が許容されれば、ロジックはトリガーシグナルを、仕分け決定841を示すI/Oコントローラー843に供する。従って、ウィンドウコンパレータ837およびパルス幅およびトリガーロジック839は、細胞がX細胞または〜X細胞として分類されるべきかに関する決定を下す。
I/Oコントローラー843は、Xまたは〜Xシグナルの形態で、仕分けコントローラーボード847に、仕分け決定841を供する。また、I/Oコントローラー843は、PC735に接続するためのUniversal Serial Bus(USB)インターフェイス849を含み、他のチャネルのスレーブコントローラー845に接続するためのI/Oポートを有し得る。また、アナログ細胞アナライザーは、幅/面積、コンパレータ、ウィンドウコンパレータおよびパルス幅およびトリガーロジックをプログラムするためのJoint Test Access Group(JTAG)ポート833を含む。
また、アナログ細胞アナライザーがデジタル細胞アナライザー705と同時に使用され得ると考えられる。例えば、アナログアナライザーを使用して、デジタルアナライザーによって使用される電圧閾値を調整してもよい。一方で、デジタルアナライザーを使用して、パルスの様々な特徴を同定してもよく、特にそれがゲートアレイで導入されるなら、この特徴情報を使用して、アナログ細胞アナライザーを配置する。
制御方法
一般的に、マイクロプロセッサー131は、スループットおよび／または所望の粒子の喪失の点でシステム1の効率を最適化して、仕分けられた産物のいずれのコスト要件も満足させることを意図する制御および仕分け戦略を実行するようにプログラムされる。これは、例えば、少なくとも１つの収集された集団の高純度への必要性および仕分けられる試料から所望の粒子の少なくとも最小パーセンテージを回収する必要性の均衡をとることを含む。特に、コストおよび採算性が重要な考慮すべき事柄である商用適用の状況では、そのような均衡を達成することが重要である。
このため、マイクロプロセッサー131は、連続した指令である制御方法および／または流体送達速度および／または仕分けパラメーターのような可変システムを制御するアルゴリズムを導入する。また、マイクロプロセッサーは、各粒子または粒子の群がどのように仕分けられるかを決定するための決定プロセスを定義する仕分け方法を導入する。各特定の制御方法は、１以上の仕分け方法を使用してもよい。様々な仕分け方法を、選択された制御方法、粒子検出システムおよび／または流体の流れにおける粒子分布に関する情報のような要因によって使用してもよい。
粒子分布に関して、図78は、粒子の例示的な分布を含有する流体の流れを示す。この特定の具体例において、流れは、上記のノズルと同様のノズルによって形成され、例えば、XおよびY精子細胞といった異なる特徴AおよびBを有する粒子の混合物を含有する。示されるように、細胞は、一般的に、粒子の順次の組として見ることができる一連の１つずつに従う。これらの組は、各々が(例えば、生X精子細胞を示す)特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が(例えば、Y精子細胞またはより一般的には、Y細胞、または死XまたはY細胞のような、生X細胞(〜X)ではない精子細胞を示す)特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および、各々が、その少なくとも１つが特徴Aを有し、およびその少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けられた粒子(例えば、１以上のX精子細胞および１以上の〜X精子細胞)を含む第３の粒子組を含む。また、第３の粒子組は、以後、「同時」粒子組と呼ばれる。
特定の粒子がそれ自体で組またはもう１つの組の一部を構成すると考えられるかは、主にその空間的位置および／または隣接する粒子に対する分離によって決まるだろう。例えば、液滴仕分けシステムにおいて、様々な粒子組は、液滴中の粒子によって定義されるだろう。下記の「光損傷仕分け」セクションで論議されるように、レーザーを使用して、選択された粒子組を除去（消すさもなければ損傷する）して、所望の含有量を有する収集された集団を提供する光損傷仕分けシステムにおいて、様々な粒子組は、粒子の空間的近接、つまり、粒子間の空間的分離が、１以上の所望の粒子も除去せずに、レーザーにより、粒子の正確な分類および／または１以上の望ましくない粒子の除去を可能にするのに十分であるかによって規定される。同様に、「粒子スイッチング仕分け」システムにおいて下記で論議されるように、選択された粒子を含有する流れの部分が、所望の含有量を有する収集された集団を提供するように進路変更される流体スイッチング仕分けシステムにおいて、様々な粒子組は、粒子の空間的近接、つまり、粒子間の空間的分離が粒子の正確な分類および／または選択された粒子の方向転換を可能にするのに十分であるかによって規定される。
前述から、所望の結果またはシステムのスループットによって、異なる粒子組に適用される仕分け決定は変動し得ることが観察されるだろう。例えば、液滴仕分けシステムにおいて、使用される仕分け方法は、「同時」液滴、つまり、第３の粒子組を含有する液滴の処理によって決まるだろう。フローサイトメトリー液滴仕分けシステムにおけるウシ精子細胞の取り扱いおよび例えば、少なくとも１つの収集された集団におけるX精子細胞の数を促進するための本明細書記載の方法において、X精子細胞を含有する各同時液滴が、たとえ液滴が〜X精子細胞も含んでいても、まるでそれがX精子細胞のみを含有するかのように許容され仕分けられる方法(同時受入戦略)を使用することが望ましいかもしれない。他方で、前述の集団において収集されたX精子細胞の純度を高めるために、たとえ同じ液滴がX精子細胞も含有しても、〜X精子細胞を含有する各同時液滴を拒否することが望ましいかもしれない(同時拒否戦略)。一般的に、下記で示されるように、粒子スループットを最大化するのに使用してもよい多くの制御方法があり、各特定の制御方法で使用され得る多くの仕分け方法がある。方法は、液滴仕分け、光損傷仕分け、および流体スイッチング仕分けのようなフローサイトメトリーを用いる様々な仕分け技術に適用することができる。さらに、上記方法を使用して、粒子のいずれかの所望の特徴または複数特徴に従って、粒子のいずれかのタイプを仕分けることができる。
１つの具体例によると、マイクロプロセッサーは、流体送達システムが、システムの他の変数の関数として、粒子を含有する流体を送達する速度を制御する。例えば、所望のアウトプット結果の関数として、マイクロプロセッサーは、流体送達速度を制御することができる。マイクロプロセッサーは、各粒子のアイデンティティーを決定し、そのようなものが少なくとも１つの収集された集団に向けられているかを決定するため、マイクロプロセッサーは、制御方法を変動することによっておよび／または仕分け方法を変動することによって、アウトプット結果を決定し制御することができる。所望のアウトプット結果は、一般的に、次:(1)特徴A粒子または特徴B粒子に関して、少なくとも１つの収集された集団の純度(「高回収」)、および(2)流れにおける特徴A粒子の総量に対する前述の集団における特徴A粒子の量、または流れにおける特徴B粒子の総量に対する前述の集団における特徴B粒子の量(「高純度」)のうちの少なくとも１つとして定義されてもよい。もう１つの例として、システムは、実質的に一定の流体送達速度を使用してもよく、マイクロプロセッサーは、所望のアウトプット結果の関数として、仕分けパラメーターを制御することができる。この後者の例において、所望のアウトプット結果は、一般的に、(1)少なくとも１つの収集された集団の粒子の純度および(2)流れにおいて入手可能であるが前述の集団に含まれない所望の粒子の量(「一定の流動」)の組合せとして定義される。
一般的に、２つの集団を仕分ける時、同定された細胞は、１つの集団または他方の一部である50/50確率を有することができると仮定してもよい。しかしながら、同定されていない細胞もまた、実際には、１つの集団または他の一部である50/50確率以外のいくつかの他の確率を有し得ることが考えられる。この他の確率は、経験的分析によってまたは仕分けられる試料に関する他の特徴から決定することができる。
いくつかの異なる制御方法は、下記でより詳細に論議される。
A.高回収制御方法
制御方法の１つのタイプは、「高回収」制御方法と呼ばれることがある。この方法の目的は、該集団の純度が許容される純度またはそれを超える限り、所望の粒子の集団に仕分けられた所望の粒子の数を最大化することである。
この方法に従い、上記の第１の粒子組は、これらの組の各々が所望の特徴Aを有する１以上の粒子を含有するため、所望の粒子の集団に仕分けられる。また、第３の粒子組は、これらの組の各々もまた特徴Bを有する１以上の粒子によって伴われているにもかかわらず、所望の特徴Aを有する１以上の粒子を含有するため、所望の粒子の集団(同時受入)に仕分けられる。他方で、第２の粒子組は、それらが所望の特徴を有する粒子を含有しないため、拒否される(つまり、所望の粒子の集団に仕分けられない)。この方法を用いてスループットを最適化するために、マイクロプロセッサーは、収集された集団の純度が許容されるレベルまたはそれを超える限り、流体送達速度を増加させる。逆に言えば、所望の粒子の集団の汚染の推定レベルは、許容されるレベルまたはそれを下回る限り、流体送達速度は増加される。一例として、図78の流体の流れにおけるXおよびY精子細胞を仕分けるための高回収制御方法の使用を考える。所望の結果は、集団が許容される純度またはそれを超えたままである限り、例えば、X/(X+Y)が85%以上またはいくつかの他の許容されるレベルである限り、X細胞の集団に全てのX細胞を仕分けることであってもよい。この結果を得るために、第１の粒子組は、それらが１以上のX細胞を含有するため、X細胞の集団に仕分けられる。また、第３の粒子組は、それらはY(または〜X)細胞も含有し得るが、それらは１以上のX細胞も含有するため、X細胞の集団に仕分けられる。第２の粒子組は、それらが１以上のX細胞を含有しないため、いくつかの他の集団に仕分けられる。この例において、流体送達システムが細胞を含有する流体をノズルに送達する速度は、X細胞の集団の純度が85%を超える限り、増加され続けるだろう。反対に、もしX細胞の集団の純度が85%を下回れば、流体送達速度は減少される。
液滴仕分けシステムに関連して、いずれかの所与の液滴発生速度につき、細胞送達速度が増加するにつれ、複数の細胞液滴の数が増加することは、ポアソン方程式から知られている。言い換えれば、細胞を含有する流体の送達速度を増加することは、複数の細胞液滴の数を増加するだろう。従って、もし同時受入仕分け方法を使用して、第３の粒子組を含有する同時液滴が所望の粒子の集団に仕分けられれば、流体送達速度を増加すると、収集された集団の純度において減少を生じるだろうが、これは流体送達速度が高ければ高いほど、より多くの同時液滴が生じ、収集されるからである。図79は、所望の粒子の100%が捕獲されるように、２つの(2)粒子流体に対するこの結果を示す。示されるように、非常の遅い流体送達速度(X軸に沿ったFDR)、得られた集団の純度(y軸)は非常に高いが、これは、第３の粒子組を含有する同時液滴はほとんど生じず収集されないからである。流体送達速度が増加するにつれ(FDRはX軸に沿って右へと増加する)、発生する同時液滴のパーセンテージは、増加し、その結果、より多くの同時液滴が収集され、使用可能な集団の純度を減少する(y軸に沿って)。示される特定の例において、流体送達速度は、約80%純度にて、30K粒子/秒である。
XおよびY精子細胞が液滴仕分けプロセスを用いて仕分けられる単純な例によって示されるように、高回収方法の使用の結果は劇的であり得る。例えば、液滴が60K/秒の速度で生じ、精子細胞が30K/秒の速度で問い合わせ位置に送達されると仮定する。ポアソン方程式によれば、もしXおよびY細胞を含有する同時液滴を含むX細胞を含有する全液滴がX細胞の集団に仕分けられれば、約15,000X細胞が毎秒収集されるだろう。収集された集団は、約2,600Y細胞を含み、X細胞に関する集団の純度は約85.2%まで減少する。しかしながら、収集されたX細胞(15,000)の数は、下記で論議される高純度方法またはモードにあるように、同時液滴が収集されない方法に対する実質的な増加を表す。40K/秒の液滴周波数および40K/秒の細胞送達(上記の高回収モード例より10K細胞/秒多い)速度で作用する高純度モードにおいて、約11,800X細胞のみが毎秒あるいは、高回収方法よりも約3,800X細胞少なく収集される。さらに、高純度方法が使用される問、約9,200X細胞が失われるか、あるいは無駄になるが、それは同時液滴がX細胞の集団に仕分けられないからである。従って、100%未満の純度が許容されるならば、高回収モードを使用して、収集されるX細胞の数を増やすか、あるいは逆に言えば、失われるX細胞の数を減らすことが望ましいかもしれない。
要約すれば、同時受入仕分け方法を用いる高回収制御方法において、粒子送達速度は、所望の粒子の収集された集団(「使用可能な」集団として呼ばれることもある)の純度に反比例する。
B.高純度制御方法
制御方法の第２のタイプは、「高純度」制御方法と呼ばれてもよい。流れにおいて入手可能な所望の粒子の総数に対する収集された集団中の所望の粒子の量が許容される量またはそれ以上である限り(つまり、流れにおける収集されていない所望の粒子の量が、許容される量未満のままである限り)、この方法の目的は、高レベルにて所望の特徴を有する粒子に関して、収集された集団の純度を維持することである。この方法に従い、上記の第１の粒子組は、所望の粒子の集団に仕分けられるが、これはれらの組の各々が所望の特徴Aを有する１以上の粒子を含有し、これらの組が汚染する粒子を全く含有しないからである。他方で、第２および第３の粒子組は、１以上の「使用不能な」集団(同時拒否)に仕分けられるのだが、これはそれらが汚染する粒子(つまり、特徴B粒子)を含有するからである。この「高純度」方法を用いてスループットを最適化するために、流れにおいて入手可能な所望の粒子の総数に対する使用可能な集団に仕分けられる所望の粒子の量が許容される量またはそれを上回る限り、マイクロプロセッサーは流体送達速度を増加する。
一例として、図78の流体の流れにおけるXおよびY精子細胞を仕分けるための高純度制御方法の使用を考える。所望の結果は、流れから収集されるX細胞の量が許容される量、例えば、少なくとも60%またはそれを超える限り、X細胞の集団へ、X細胞の全てを仕分けることであってもよい。この結果を得るために、１以上のX細胞のみを含有するため、第１の粒子組は、使用可能な集団に仕分けられる。他方で、１以上の汚染する(〜X)細胞を含有するため、第２および第３の粒子組は、１以上の使用不可能な集団に仕分けられる。この例において、仕分けられているX細胞の総入手可能な量のパーセンテージとしての使用可能な集団において収集されるX細胞の量が60%またはそれ以上のままである限り、流体送達システムが細胞を含有する流体をノズルに送達する速度は増加し続けるだろう。反対に、もし使用可能な集団において収集されないX細胞の量が、仕分けられている入手可能なX細胞の総数の約40%を超えるなら、流体送達速度は減少する。
液滴仕分けシステムの文脈で上記されるように、流体送達速度を増加すると、複数の細胞液滴の数、従って第３の粒子組を含有する同時液滴の数を増加することは知られている。同時液滴は、同時拒否仕分け方法を用いる時、収集されたX細胞の集団に仕分けられないため、これは、流体送達速度を増加すると、使用不可能な集団に失った生X細胞の量の増加を招くことを意味する。
図80は、使用可能な集団が100%純度の所望の粒子を有するように、２つの(2)粒子に対するこの結果を示す。示されるように、非常に低い流体送達速度(X軸に沿ったFDR)、使用可能な集団の所望の粒子のパーセンテージは非常に高く、これは同時液滴がほとんど発生せず拒否されていないからである。流体送達速度が増加するにつれ(FDRはX軸に沿って右に増加する)、第３の粒子組を含有する同時液滴のパーセンテージは増加し、より多くのそのような組は拒否される。このため、流れにおいて入手可能な所望の粒子の総量に対する使用可能な集団に仕分けられる所望の粒子の量(つまり、使用可能な集団において収集される流れからの所望の粒子のパーセンテージ)は減少する。示される特定の例において、流体送達速度は約40K粒子/秒であり、所望の粒子の約75%は使用可能な集団に仕分けられる。
要約すると、同時拒否仕分け方法を実行する高純度制御方法において、粒子送達速度は、収集された集団における所望の粒子のパーセンテージ(つまり、使用可能な集団における所望の粒子の高純度)に反比例する。
C.一定流速制御方法
制御方法の第３のタイプは、一定流速制御方法と呼ばれる。この方法において、少なくとも１つの収集された集団の純度が許容されるレベルであるかまたはそれを上回る限り、および該集団における所望の粒子の総量が、処理されている所望の粒子に対する許容される量であるかまたはそれを超える限り、マイクロプロセッサーは、流体送達速度を一定に(あるいは一定の範囲内に)維持し、収集された（または拒否された)同時液滴のパーセンテージを変動する。反対に言えば、使用可能な集団の汚染の可能なレベルが純度の許容されるレベルであるかそれを下回る限りおよび前述の(使用可能な)集団以外の集団に失われた所望の粒子の可能な量が許容される量であるかそれ未満である限り、流体送達速度は一定であり、許容される（または拒否される)同時液滴のパーセンテージは変動する。
一例として、図78に示される流体の流れを仕分けるための一定流速制御戦略の使用を考える。所望の結果は、少なくとも85%の純度を有する使用可能な集団にX精子細胞を仕分け、流れ中のX細胞の少なくとも60%を収集し、そうすることで、X細胞の40%以下が使用不可能な集団に仕分けられることであってもよい。この例において、X細胞に関する使用可能な集団の純度が、85%と同等またはそれより大きい限り、および使用不可能な集団に仕分けられたX細胞のパーセンテージが40%未満で、使用可能な集団に仕分けられた所望の粒子のパーセンテージが60%と同等またはそれ以上(可変同時受入仕分け方法)になる限り、流体送達システムが粒子を送達する速度は、一定に維持され、収集されたまたは拒否された第３の粒子組(同時組)のパーセントは変動するだろう。許容される第３の粒子組のパーセンテージが増加するにつれ、使用可能な集団の純度は減少するが、使用不可能な集団に仕分けられる所望の粒子(例えば、X細胞)の量は減少する。反対に、許容される第３の粒子組のパーセンテージが減少するにつれ、使用可能な集団の純度は増加するが、使用不可能な集団に仕分けられる所望の粒子(例えば、X細胞)の量は増加する。
上記のように、複数の細胞の液滴の数(すなわち、第３の粒子組を含有する同時液滴の数)が、流体(細胞)送達速度に対して一定であることは、ポアソン方程式から知られている。液滴の数はこの制御方法において一定であるため、使用可能な集団に仕分けられる同時液滴のパーセンテージは、使用可能な集団の純度および使用不可能な集団に仕分けられることによって無駄になるX細胞の量の両方に影響を及ぼすだろう。これは、収集された使用不可能な集団に許容され仕分けられた同時液滴中の不要なY(または〜X)細胞のパーセントが、拒否され、すなわち収集された使用可能な集団に仕分けられていない同時液滴中のX細胞のパーセントに反比例するためである。
図81は、フローサイトメトリー液滴仕分けシステムにおける一定流体送達速度制御方法および２つの(2)粒子流体に対し可変同時拒否仕分け方法を実行する本明細書中に記載されるような方法を示す。示されるように、線OLは、許容される同時液滴(y軸)のパーセンテージと比較した拒否された同時液滴(X軸)のパーセンテージの間の反比例関係を示す。非常に低いパーセンテージの許容される 同時液滴が存在する時、非常に高いパーセンテージの拒否された同時液滴が存在する。反対に、非常に高いパーセンテージの受け入れられた同時液滴が存在する時、非常に低いパーセンテージの拒否された同時液滴が存在する。線OLは、この反比例関係を示し、所与の一定の粒子流速での可変同時受入仕分け方法の操作ラインを表す。操作ラインOLに沿った図81における点Pにて、使用可能な集団の純度は、粒子流速、例えば、85%純度によって所与のパーセンテージである。許容される同時液滴のパーセンテージが、操作ラインOLに沿って（左および上向きに）増加するにつれ、使用可能な集団に仕分けられる望ましくない粒子の数は増加し、純度は85%を切り、これは許容不可能であるかもしれない。許容される同時液滴のパーセンテージが操作ラインOLに沿って（右および下向きに）減少するにつれ、純度は85%を超え、許容される。
操作ラインOLに沿った点LLにて、使用不可能な集団に仕分けられることによって無駄になる所望の粒子のパーセンテージが粒子送達速度に基づいた所与のパーセンテージ、例えば、40%であるように、同時液滴の75%は拒否される(つまり、使用不可能な集団に仕分けられる)。液滴のパーセンテージが操作ラインOLに沿って（右および下向きに）増加するにつれ、使用可能な集団に仕分けられる所望の粒子のパーセンテージは、(例えば、<60%まで)減少し、これは許容されないかもしれない。拒否された同時液滴のパーセンテージが操作ラインOLに沿う（左および上向きに）につれ、使用可能な集団に仕分けられる所望の粒子のパーセンテージは、（例えば、>60%まで)増加し、許容される。従って、可変同時受入仕分け方法を実行する一定流速制御方法に対する本発明のこの態様によって、マイクロプロセッサーは、受け入れられたおよび拒否された同時液滴のパーセンテージが、矢印ORによって示されるように、点P1およびLLの間の操作範囲を変動するように、システムを操作してもよい。操作範囲ORは、使用不可能な集団に対する不純度および所望の粒子の喪失に対する耐性のレベルによって、操作ラインの大部分を網羅し得ることに留意されたし。
要約すると、可変同時受入仕分け方法を用いる一定流速制御方法において、許容される第３の粒子組のパーセンテージは、使用可能な集団の純度に反比例し、使用不可能な集団に仕分けられることによって無駄になった所望の粒子の量に反比例する。
D.制御方法の要約
次の表は、上記の制御方法の概要である。
Figure 0004614947
 関連して、上記制御方法の１つを用いて入手された仕分けられた試料を第２の試料と組み合わせて、所望の特徴を有する最終（例えば、商用）試料を得ることができる。例えば、100%純粋な集団を生成する高純度に従い仕分けられる試料は、80%純度に仕分けられる同一の容量の集団と組み合わされて、90%の純度を有する最終試料を生成することができる。あるいは高純度に仕分けられる動物精子の場合、仕分けられた精子のアリコート量は、仕分けられていない精子のアリコート量と組み合わされて、上記仕分け方法のいずれかを用いて精子の全体の量を仕分けるよりも低コストにて所望の純度の最終試料を生成することができる。
制御方法の上記記載は、各同時液滴を含む各液滴の正確な同定および仕分けを仮定する。実際には、100%正確性は、いくつもの理由のため不可能である。従って、汚染を最小限に止めるために、所望の集団に属すると確実に分類することができない粒子を拒否することが望ましいかもしれない。他方で、もし特定の粒子が、特定の選択された確率(例えば、精子細胞の場合、50%より大きい)内で所望の集団中に属すると同定され分類され得るなら、それらが使用不可能な集団に失われないように、所望の集団に属するとして、粒子を分類することが望ましいかもしれない。従って、先に論議したように、精子細胞のような粒子は、そのような粒子が使用可能な集団に属する確率に基づき、所望の細胞の集団への仕分けに許容され、または拒否されてもよい。
上記表および本出願において使用される用語「使用可能」および「使用不可能な」は、便宜のためのみに使用され、決して制限するように意図されていない。従って「使用可能な」集団は、それがどのように使用されるかまたは使用されるかに拘わらず、いずれかの「第１の」集団を含み、「使用不可能な」集団は、どのようにそれが使用されるかまたはそれが使用されるかに拘わらず、使用可能な集団とは異なるいずれかの「第２の」集団を含む。同様に、「所望の」集団は、選択された粒子特徴に従って仕分けられるいずれかの集団を意味する。
マイクロプロセッサーおよびそのシグナル処理ソフトウェアは、光検出器からの電子シグナルを処理するためのシステムを構成して、粒子の特徴に従って粒子(例えば、一般的には粒子、特に精子粒子)を分類して、図78に関して上記のように、粒子の分布に関する情報を得る。さらに、マイクロプロセッサーは、粒子の分布に関する得られた情報の関数として、流体送達システムがノズルシステムに粒子を送達する速度を変動させるためのシグナル処理ソフトウェアに応答性の制御システムを構成する。さらに、マイクロプロセッサーは、粒子の分布に関する得られた情報の関数として、仕分け方法を変動するためのシグナル処理ソフトウェアに応答性の制御システムを構成する。
一般的には、マイクロプロセッサーは、その仕分け方法を変動するための仕分けシステムを制御するためのまたは流体送達システムを制御するためのフローサイトメトリー装置から受け取られた情報に応答性の制御システムを構成する。言い換えると、マイクロプロセッサーは、第１のモードにおいて操作して、仕分け方法を変動することが可能であり、流体送達システムを制御するために第２のモードにおいて操作することが可能であり、仕分け方法を変動するためにおよび流体送達システムを制御するために第３のモードにおいて操作することが可能であり、他のモードで操作することが可能であってもよい。第１または第３のモードにおいて操作する時、マイクロプロセッサーは、流体が以下の:(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する少なくとも１つの集団の純度、および(2)流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動することが可能である。
収集システム
偏向板の間を通った後に液滴を収集するのに、収集システムが必要である。慣用的サイトメーターのための収集システムは、それらが偏向プレートの間を通過した後、様々な液滴流れ中の液滴を捕獲するように配置された収集容器以上のものでなくてよい。同様の慣用的な収集システムを、本発明のいくつかの具体例において使用することができる。
しかしながら、ノズルが上向きの角度で流体の流れを方向付けるように配置され、それにより液滴に左右方向の速度要素を与える本発明の具体例においては、慣用的な収集システムを使用することは困難かもしれない。１つの問題は、液滴が、それらが収集容器に落ちるのに適当である下向きの動きを開始する前に、弓なりの曲線に沿って、いくらかの水平距離を移動するであろうということである。例えば、もしノズルが45°ないし60°の範囲にて、上向きに置かれ、液滴が15m/sおよび20m/sの間の速度にて出て行くなら、液滴は、それらが曲線の頂点に達し、下向きの動きを始める前に、ノズルから数メーター離れた水平距離であろう。従って、相当量のラボ空間は、液滴流れによって占められるだろう。また、さらに、数メーターの範囲にて、液滴が適切な収集容器に落ちることを確実にするのは困難であろう。液滴流れの曲線は、サイトメーターに対する１以上の操作条件が変化する時(例えば、ノズルオリフィスでの流体速度における変化を生じる流体送達速度への調整)はいつでも変化し得る。液滴流れの曲線の変化は、液滴が移動する距離によって拡大されるだろう。従って、ノズルの比較的近くの地点で液滴位置の望ましい変化を生じない曲線の変化は、ノズルから離れた位置の液滴の位置において有意な変化を生じ得るだろう。上記で論議されるように、本発明のいくつかの具体例は、曲線を定期的に改変する液滴流れを生じ得る液滴形成および／または試料流体送達システムへのフィードバックを使用する。また、シース流体がノズルに送達される圧力を変動させたい者がいるかもしれない。気流、温度変化、および湿度変化も、液滴流れの曲線を改変し得るだろう。液滴流れの軌道を変化し得るいずれの要因も、液滴が望ましい収集容器に落ちるように、収集容器を再配置することを必要とするだろう。対照的に、下向きノズルを有する慣用的なサイトメーターにおける液滴流れの曲線は、変動にあまり感受性でない。例えば、液滴流れが実質的に下向きの初期速度を有するという事実は、オリフィスでの流体速度の変動が、曲線においていずれかの有意な変動を生じないことを意味する。さらに、収集容器は、液滴流れにおける軌道変動により耐性のある収集システムを作るノズルに比較的近い。
図83-85は、本発明のシステムにおいて仕分けられた液滴を収集するのに使用され得る一般的に2201と示される収集システムの１つの具体例を示す。
サイトメーターノズルシステム101が上向き角度または水平要素を有するいずれかの他の角度にて、流体の流れ21を方向付けるように配置される時、収集システムは、液滴33の収集に特に適している。液滴が偏向板629の間を通過する時、それらは異なる弓なりの曲線を有する複数の液滴流れ123、125(例えば、２つ)に仕分けられる。図84および85に示されるように、各液滴流れの軌道は、デバイス2203をインターセプト（intercept）する２つの液滴のうちの１つへと導く。もし液滴が２以上の液滴流れに仕分けられるなら、別々のインターセプティング（intercepting)デバイスが、各さらなる液滴流れに供される必要があるだろう。従って、本発明の収集システムのインターセプティングデバイスの数は、液滴が仕分けられる流れの数によって決まるだろう。
例示的収集システムの各インターセプティングデバイス2203は、各インターセプティングデバイスの下に置かれた収集容器2207に、軌道に沿って動く液滴をそらすために、液滴流れのうちの１つの軌道にわたるように置かれたインパクト表面2205を有する。インパクト表面は、好ましくは、柔軟な材料で作られる。特定の理論に縛られずに言えば、柔軟な材料は、インターセプティングデバイスの表面にぶつかる液滴の衝撃を吸収し、それにより、液滴中の粒子(例えば、精子細胞)への損傷を減らすと考えられる。例えば、インターセプティングデバイスは、ポリプロピレン、ポリエチレン、あるいは他の同様なポリマーで構成されてもよい。図86および87を参照すると、インターセプティングデバイス2203は、ピペット2215の球部2213の一方側における液滴進入路2211(例えば、三角形ウィンドウ)を切断することによって構築されている。かくして、液滴の対抗側の球部の内側壁2217の一部は、各液滴流の軌道にわたる曲面インパクト表面を形成する。便宜には、ピペットの管は液体をインパクト表面から収集容器に向けるためのガイド2225として働く。
図84を参照すると、インターセプティングデバイスは、それらを所定の位置に維持する収集システムフレーム2227に固定される。液滴流れの曲線の変動を説明するために、インターセプティングデバイスの位置の調整を可能にするのが望ましい。例えば、各インターセプティングデバイスの垂直な高さは、ホルダー2229を通って、円形内径内を上下に、導管を滑らすことによって調整してもよい。インターセプティングデバイスが所望の高さにある時、位置決めねじ2231を締めてそれをその高さで維持することができる。ホルダーは、収集システムフレームに取り付けられた取り付けプレート2233に、例えば位置決めねじ2235(例えば、２つの位置決めねじ)によって取り付けられてもよい。位置決めねじ2235は、取り付けプレートの水平スロット2241を通って、インターセプティングデバイスの側部調整を可能にする。調整後、位置決めねじは、所望の位置に円形ホルダーを維持するように固定されてもよい。当業者は、本発明の範囲から逸脱せずに、多種多様の他の固定デバイスを使用して、インターセプティングデバイスの位置を調整できることを認識するだろう。収集容器2207は、収集容器を保持するためのトレイ2243のスロット2241のインターセプティングデバイスの下に維持される。従って、各収集容器は、それがそれぞれのインターセプティングデバイス下の位置に留まるように、必要に応じて、それぞれのスロット内を動かされてもよい。また、水槽(図示せず)が、所望により、収集容器辺りに供されて、収集容器の内容物の温度を制御してもよい。
図85を参照すると、本発明の１つの具体例において、１以上の液滴流がインターセプティングデバイスを通過するのを可能とするために、インターセプティングデバイス2247の１つの裏面がカットされている。第２のインターセプティングデバイス2249は、このウィンドウを通過する液滴をインターセプトするために、出口ウィンドウの後に位置している。第２のインターセプティングデバイスに対する例示的な進入ウィンドウは、第１のインターセプティングデバイスに対する例示的な出口ウィンドウと大体同じサイズであってもよい。明白になるであろう理由のため、出口ウィンドウは、第１のインターセプティングデバイスに対する進入ウィンドウより有意に小さいのが望ましい。例えば、第１のインターセプティングデバイスに対する例示的な進入ウィンドウは、高さ約5/8インチおよび幅約3/8インチである。対照的に、例示的出口ウィンドウは、高さ1/8インチおよび幅5/16インチであってもよい。
サイトメーターの操作の間、収集システムは、仕分けられた流れ中の液滴をインターセプトするように操作する。次いで、インターセプトされた液滴は、インターセプティングデバイス2203の導管2225を通って収集容器2207へと流れ落ちる。サイトメーターが弓なりの曲線に沿って液滴流れを方向付ける上向きサイトメーターノズルを有する場合、例えば、インターセプティングデバイスは、液滴が、液滴が慣用的収集システム(つまり、デバイスなしの収集システム)によって収集されるであろう地点と比較して、ノズルに有意により近い軌道上の地点にてインターセプトされるのを可能にする。
その弓なりの軌道に沿って、比較的速く(例えば、それらがまだ上向きに動いている間)液滴流れをインターセプトすることで、液滴が最初に収集システムに遭遇する時に、液滴の位置の変動の量が減少する。従って、収集システムは、慣用的な収集システムが耐え得る液滴流れの軌道のより大きな変動に耐えることができる。同様に、液滴は、それらの収集システムへのより短い経路のため、気流によって吹き付けられる可能性が低い。
インターセプティングデバイス2203をノズル101のより近くに動かして、軌道変動に対する耐性を増加させることと、インターセプティングデバイスをノズルオリフィスから遠くに動かして、それらが実質的に曲線の頂点の液滴流れをインターセプトするように、インターセプティングデバイスを位置させることによるように、液滴がインターセプティングデバイスに衝撃を与える時、衝撃の力を減らすまたは最小化することとの間に均衡が取られなければならない。従って、インターセプティングデバイスの最良の位置は、仕分けられる粒子(例えば、精子細胞)の耐久性、液滴速度、および液滴流軌道の変動の予測される大きさによって決まるだろう。ノズルオリフィスにて約16ないし20m/sの速度を有するウシ精子細胞を含有する液滴の場合、例えば、インターセプティングデバイスは、ノズルオリフィスから4-6インチの範囲に位置させることができる。第１のインターセプティングデバイスが出口ウィンドウを有し、第２のインターセプティングデバイスが第１のインターセプティングデバイスの後ろに置かれる具体例において、例えば第１のインターセプティングデバイスは、ノズルから約4および5インチの範囲であってもよい。より望ましくは、第１のインターセプティングデバイスはノズルから約4.5インチである。第２のインターセプティングデバイスは、ノズルから約5ないし6インチの範囲であってもよい。より望ましくは、第２のインターセプティングデバイスは、ノズルから約5.5インチである。
１つのインターセプティングデバイス2203が、もう１つのインターセプティングデバイスの出口ウィンドウを通過する液滴をインターセプトするように位置させる配置は、仕分けられた集団のうちの１つの純度について考えていない(例えば、乳牛を育種するのに用いるために仕分けられた精子の場合におけるY染色体-担持精子)時、特に有利である。当業者は、未知の含有量を有する多数の漂遊液滴2265(例えば、漂遊液滴のミスト)が、図85に示されるように、仕分けられた流れ中の液滴に加えて、サイトメーターによって生成され得ることを知るだろう。第１のインターセプティングデバイスは、第１のインターセプティングデバイスのインパクト表面2205に当たり、純度が最も臨界的である流れが出口ウィンドウ 2245を通過して第２のインターセプティングデバイスのインパクト表面に当たるように位置させるべきである。このように、図85に示すように、漂遊液滴の大部分は、純度について余り関心がない集団を含有する収集容器2207に収集され、純度が臨界的である集団を汚染しないであろう。また、漂遊液滴をインターセプトし、収集することによって、あたかも漂遊液滴が収集システムから逃げるように、しばしば洗浄する必要性が回避される。第１のインターセプティングデバイスとは対照的に、第２のインターセプティングデバイスは、より小さな出口ウィンドウを通過する液滴を方向転換するに過ぎない。これは、第２のインターセプティングデバイスによって収集された集団の純度の維持を容易とする。
当業者は、例示的な収集システムが、本発明の範囲から逸脱せずに、多くの方法で容易に修飾することができることを認識するだろう。例えば、本発明の範囲から逸脱せずに、その直下に、一体的に形成された（あるいはさもなければ取り付けられた）収集容器を有する液滴 インターセプティングデバイスを構築することが可能であろう。同様に、図83-87中に示される具体例のインターセプティングデバイスは、修飾されたピペットであるが、インターセプティングデバイス2203は、本発明の範囲から逸脱せずに、様々な形状のいずれかであり得ることが理解される。例えば、各インターセプティングデバイスは、平面または曲がったシート、スプーン、ボール、または他の同様の形状を含んでもよい。唯一の必要条件は、インターセプティングデバイスが液滴流れのそれぞれの軌道に沿って動く液滴をインターセプトし、インターセプトされた液滴を収集容器に流すように操作可能であることである。しかしながら、ピペットのような容易に入手でき、かつ比較的安価な製品からインターセプティングデバイスを構築する１つの利点は、試料の流れの間にインターセプティングデバイスを洗浄するよりはむしろ各試料の流れの後に使用したインターセプティングデバイスを置き換え、捨てるのがより経済的であるということである。
収集流体
仕分けられた精子は、収集流体2301(図56および57)を含有する容器中に収集される。一般的には、収集流体の目的は、精子細胞の衝撃を収集容器で吸収し、細胞に流体支持体を供することを含む。これらの考慮と一致して、収集流体は、緩衝剤または緩衝液および蛋白質源を含み得る。
もし含まれるなら、収集流体中に使用され得る緩衝剤または緩衝液の例は、試料収集および希釈に関して上記に開示される。典型的には、これらの緩衝剤または緩衝液は、約0.001Mないし約1.0Mの濃度であり、約4.5ないし約8.5、好ましくは約7.0のpHを有するだろう。１つの具体例において、収集流体は、約7.0のpHにて、0.96% ダルベッコの PBS(w/v)を含む緩衝剤を含有する。もう１つの具体例において、収集流体は、精製水の0.204g NaHCO3、0.433g KHCO3、および0.473g C6H8O7・H2O/25mLを含む代謝阻害剤を含有する(水中、0.097モル/LのNaHCO3、0.173モル/LのKHCO3、0.090モル/LのC6H8O7・H2O)。
もし含まれるなら、蛋白質源は、精子細胞の生存能力と干渉せず、使用される特定の緩衝剤または緩衝液と適合性のあるいずれの蛋白質源であってもよい。一般的な蛋白質源の例は、（加熱均質化およびスキム）乳、乳抽出物、卵黄、卵黄抽出物、大豆蛋白質および大豆蛋白質抽出物を含む。そのような蛋白質は、約1%(v/v)ないし約30%(v/v)、好ましくは約10%(v/v)ないし約20%(v/v)、およびより好ましくは約10%(v/v)の濃度で使用されてもよい。乳は、緩衝剤または緩衝液と併せて使用されてもよいが、一般的には、乳は、それ自体、緩衝剤または緩衝液と同じ目的を果たし得る溶液であるため、その不在下で使用される。そのような例において、収集流体は、約80%(v/v)ないし約90%(v/v)の乳を含有し得る。
蛋白質源に加えて、またはそれに代わって、収集流体は、精漿も含んでもよい。精漿は、精子生存性および運動性を改善することおよび精子膜を安定させること(それにより、精子の収集および貯蔵の間、受精能獲得を防ぐ）の２つの利益を果たす。Maxwell et al., Reprod. Fert. Dev.(1998) 10: 433-440.精漿は、精液試料が得られたのと同一の哺乳類から、同じ種の異なる哺乳類から、異なる種の哺乳類からであってもよい。もし収集流体に含まれるなら、典型的には、精漿のパーセンテージは、約0.5%(v/v)ないし約10%(v/v)の範囲だろう。もし、例えば卵黄または乳のような蛋白質源と併用されるなら、精漿および蛋白質源の総パーセンテージは、約1%(v/v)ないし約30%(v/v)の範囲だろう。そのような例において、精漿のパーセンテージは、蛋白質源のパーセンテージに反比例するだろう。従って、１つの具体例において、収集流体は、精漿を含む。もう１つの具体例において、収集流体は、約0.5%(v/v)ないし約10%(v/v)の量で、好ましくは、約4%(v/v)ないし約6%(v/v)の量で、より好ましくは約5%(v/v)の量で、精漿を含有する。もう１つの具体例において、収集流体は、蛋白質源および精漿を含有する。さらにもう１つの具体例において、収集流体は、精漿および卵黄を含み、両方のパーセンテージは、合計で、約1%(v/v)および約30%(v/v)の間である。
所望により、収集流体は、精子生存性または運動性に利益的である、ある範囲の添加剤も含有し得る。そのような添加剤の例は、エネルギー源、抗生物質、および細胞内および／または細胞外で酸化／還元反応を調節する組成物を含み、これらの各々は、試料収集および希釈に関して上記で論議される。そのような添加剤は、それに従って、収集流体に添加され得る。
従って、特定の具体例において、収集流体は、約7.0のpHにて、水中に、0.96% ダルベッコのPBS(w/v)、1%(w/v)フルクトース、10%(v/v)卵黄を含む。さらにもう１つの具体例において、収集流体は、さらに、10mMピルビン酸、100μMビタミンK、または1mMのリポ酸を含む。
別法として、および収集流体の使用に代わって、仕分けられた細胞は、続いての低温保存工程で使用されるおよびさらに下記される低温エキステンダーを含有するまたはそれで覆われた容器に収集されてもよい。従って、１つの特定の具体例において、仕分けられた細胞は、低温エキステンダーに収集される。もう１つの具体例において、収集された細胞は、水、Triladyl（登録商標）(Minitube, Verona, WI,グリセロール、トリス、クエン酸、果糖、5mg/100ml チロシン、25mg/100ml ゲンタマイシン、30mg/100mlスペクチノマイシン、および15mg/100mlリンコマイシンを含む)、卵黄およびピルビン酸を含む低温エキステンダーに仕分けられる。さらにもう１つの具体例において、収集流体は、75mLの水中に、25gTriladyl（登録商標）、25g卵黄、および10mMピルビン酸を含む低温エキステンダーである。
本明細書中に開示される収集流体中の蛋白質のパーセント濃度は、フロー仕分けされた細胞の添加前のものであることが理解されるべきである。フロー仕分けされた細胞の添加は、収集流体の最終濃度を、フロー仕分けされた細胞の添加前であったものの約1/20まで希釈するだろう。従って、例えば、収集流体は、最初は、約10%(v/v)卵黄を含有し得る。フロー仕分けされた細胞が収集流体を含有する収集容器に収集された後、卵黄の最終濃度は、約0.5%(v/v)まで減少されるだろう。
インターセプティングデバイスおよび／または収集容器の前処理
本発明に従って仕分けられ得る粒子(例えば、精子細胞)への潜在的損傷を最小化するために、インターセプティングデバイス2203および／または収集容器2207(図56-60)は、使用前に処理されてもよい。そのような前処理は、例えば、粒子およびインターセプティングデバイスの間のインパクトを最小化するように働く組成物を含有する浴にインターセプティングデバイスおよび収集容器を接触または浸漬させることを含むことができる。インターセプティングデバイスおよび収集容器の浴からの取り出しに際し、ある量の組成物はインターセプティングデバイスおよび収集容器に残り、液滴中の粒子用のクッション剤として働く。従って、組成物は、所望のクッション効果を供するのに適した特徴を有するべきである。加えて、組成物は、また、粒子または仕分けられる細胞、シース流体、および収集流体と適合性があるべきである。これらの考慮と一致して、インターセプティングデバイスおよび収集容器を処理するのに使用される組成物は、緩衝剤または緩衝液、シース流体、収集流体、低温エキステンダー、緩衝液、シース流体、収集流体、または低温エキステンダーに含有されるいずれかの成分、またはそのいずれかの組合せを含み得る。本発明の方法に従って、精子細胞の染色および分離に使用される緩衝剤、緩衝液、シース流体、および収集流体は上記される。従って、１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器はシース流体と接触される(例えば、浸漬されたりあるいは磨かれる）。もう１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は収集流体と接触される。さらにもう１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、下記の低温エキステンダーと接触される。
組成物とインターセプティングデバイスおよび収集容器との接触または浸漬は、好ましくは、組成物がインターセプティングデバイスおよび収集容器の表面に付着するのを可能にするのに十分な時間起こる。そのような時間は、一般的には、約90分未満、好ましくは約60分未満、より好ましくは、約30ないし約60分、最も好ましくは約60分である。さらにもう１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、単に、使用前に組成物と接触される。
インターセプティングデバイスおよび収集容器の上記組成物との接触の代わりに、あるいはそれと併せて、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、また、シース流体、収集流体、例えば、BSA、SSS、卵黄、卵黄抽出物、(熱加熱均質化およびスキムを含む)乳、乳抽出物、大豆蛋白質、および大豆蛋白質抽出物のようなおよび／または低温エキステンダー中に含有される特定の成分と接触させてもよい。従って、１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、シース流体と接触され、引き続いて、0.1%(v/v)ウシ血清アルブミンと接触される。もう１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、シース流体と接触させ、引き続いて、10%(v/v)卵黄と接触させる。もう１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、収集流体に浸漬され、引き続いて0.1%(v/v) ウシ血清アルブミンと接触させる。もう１つの具体例において、インターセプティングデバイスおよび収集容器は、収集流体に浸漬され、引き続いて10%(v/v)卵黄と接触させる。
インターセプティングデバイスおよび収集容器は、上記の各具体例において同じ前処理を受け取るが、本発明の範囲から逸脱せずに、インターセプティングデバイスおよび収集容器に対して異なる前処理プロトコルを使用することは可能である。同様に、いくつかのインターセプティングデバイスまたは収集容器は、１つの前処理を受け、インターセプティングデバイスまたは収集容器の他は、本発明の範囲から逸脱せずに、異なる前処理を受けることができる。再び本発明の範囲から逸脱せずに、前処理の特定の利益は、また、インターセプティングデバイスのみまたは収集容器のみを前処理することによって得ることができる。
濃度
上記のように、フローサイトメーターによって収集された仕分けられた精子は、様々な緩衝剤およびエキステンダー、染色流体、シース流体、および収集流体の添加によって希釈されている。典型的には、上記のようにフローサイトメトリーによって仕分けられた後の精子細胞の濃度は、約0.7ないし1.4 x106精子細胞/mlの範囲である。従って、仕分けられた精子細胞を濃縮して、精子への希釈衝撃を最小化し、冷凍保存および人工授精のために、精子の適切な濃度を獲得することが重要である。畜産業における標準的な実践は、例えば、約20 x 106または約40 x 106 精子細胞/mlのいずれかの濃度にて、精子と人工授精を実施することである。精子細胞を濃縮する１つの方法は、サイトメーターによって収集された流体の遠心分離を通してである。精子を濃縮するもう１つの方法は、サイトメーターによって収集された流体を、濾過システムに通すことである。これらの方法は、下記でより詳細に論議される。
A.遠心分離
いずれかの慣用的な遠心分離機を使用して、精子を濃縮することができる。しかしながら、商用操作において、一度に大きなバッチの精子細胞を遠心分離する能力を有する遠心分離機を使用することが好ましい。遠心分離の間、大部分の精子細胞は、精子細胞に対して作用する遠心分離力のため、遠心分離管の下部にあるペレット中に集まる。遠心分離力の規模は、便宜により、遠心分離力が重力を超える倍数として述べられる。遠心分離力は、臨界パラメーターであり、いずれかの所与のスピード(角速度)での遠心分離力の規模は、曲率の半径の長さによって変動するため、遠心分離の速度は、典型的には、遠心分離力の規模を述べることによって特定される。例えば、600g力は、遠心分離の角速度が、得られた遠心分離力が重力の600倍になるように選択されることを意味する。ペレットに遠心分離されるのを逃れる流体およびY精子細胞の大部分は、上澄み中にあるだろう。一般的には、上澄みは除去され、ペレット中の精子細胞は、下記のようにさらなる処理のために再懸濁される。同時に精子細胞への損傷を最小化しつつ、ペレット内で濃縮される精子のパーセンテージを最大化することが重要である。
本発明の１つの方法に従って、約10 x 106 の仕分けられた精子細胞を含有する遠心分離管を、遠心分離機に入れる。濃縮を促進するために、遠心分離管を、サイトメーターの収集システムにおいて収集容器として使用してもよい。これによって、遠心分離前に、仕分けられた精子細胞を遠心分離管に移す必要を避ける。管は、濃縮された精子細胞のペレットを管の下部で形成させるのに十分な速度および継続時間、遠心分離される。遠心分離の速度および継続時間は、望ましくは:精子細胞が脆く、過剰な速度にて遠心分離によって損傷され得る;遠心分離管のサイズが、精子細胞が管の下まで動くのに必要な時間に影響を及ぼす;および遠心分離が長く続けば続くほど、所与の速度での遠心分離によって、精子細胞が損傷される可能性がより高くなるという要因を含むいくつかの要因の考慮において選択される。従って、本発明の１つの具体例において、遠心分離管は、約6-10分の間、550-800gにて遠心分離される。本発明のもう１つの具体例に従い、遠心分離管は、約6-10分の期間、650-750gにて遠心分離される。さらにもう１つの具体例において、遠心分離管は、約6-10分の期間、700gにて遠心分離される。さらにもう１つの具体例においてI、遠心分離管は、約7分の期間、700gにて遠心分離される。
次の実験において示されるように、遠心分離機の速度および遠心分離の継続時間は、回収される精子細胞のパーセンテージおよび回収された精子細胞の運動性に影響を及ぼし得る。実験は、実際に精子細胞を仕分けることなしに実行した。代わりに、緩衝剤、エキステンダー、シース流体および染色流体を含む様々な流体を、精液試料に添加して、仕分け工程を刺激した。次いで、試料を、精子細胞を濃縮しようと、遠心分離した。
遠心分離実施例I
遠心分離実施例Iにおいて、上記のように、ウシ血清を収集し、評価した。精液試料を、ある量の7.3のpHを有するトリス-クエン酸("TCA")で希釈して、150 x 106 精子細胞/mlの濃度を得た。精子を、２０分間、41℃にて、Hoechst 33342(100μM)で染色した。２つの15ml管を、シミュレーションのために、緩衝剤で調製した。管1を、部分的に、10% 卵黄を含む750μlのリン酸緩衝生理食塩水("PBS")および0.1 % ウシ血清アルブミン("BSA")を含む14.25ml PBSで充填した。管2を部分的に10% 卵黄を含む750 ul TCAおよび0.1% BSAを含む14.25ml PBSで充填した。２つの管の各々は、染色された精子を含有する100 ulの溶液を受け取り、次いで、これらを室温にて20分間インキュベートした。次いで、２つの管を、各々、7mlの２アリコートへと分けた。各管からの１アリコートを、固定されたバケツ遠心分離機で、7分間、2250 rpm(約540g)にて遠心分離した。２つの管の各々からの他のアリコートを、7分間、2500 rpm(約660 g)にて遠心分離した。遠心分離の直後、10ml ピペットを使用して、各アリコートから上澄みを除去して保存した。ペレットを200 ulのTCA中で、10%卵黄(pH 7.0)で再懸濁した。遠心分離前後の精子運動性を位相コントラスト顕微鏡下で観察した。５０ulの固定剤(3.4% クエン酸ナトリウム中0.1%グルタルアルデヒド)を、各ペレットおよび上澄みに添加して、血球計による濃縮決定のために精子を固定した。精子の総数を、血球計によって決定されたように、対応する精子濃度によって掛けられた使用された／回収された容量に基づき計算した。回収率を、ペレット中の精子の総数および上澄み中の精子の総数の合計によって割ったペレット中の精子の総数として計算した。
図88および89に示されるように、結果は、遠心分離速度を変動することによって生じた精子細胞運動性の差はほとんどないことを示す。また、結果は、PBSと比較して、TCSを使用した方が僅かに運動性が良かったことを示す。
遠心分離実施例II
遠心分離実施例IIにおいて、上記のように、３つの雄牛からの精液試料を収集し、評価した。試料の１つは、初期条件質制御基準に満たなかったため、不適当であった。他の２つの精液試料を、ある量の7.3のpHを有するTCAで希釈して、150 x 106精子/mlの精子濃度を得た。精子を、２０分間、41℃にて、10μM Hoechst 33342溶液で染色した。10%卵黄を含む1500μl PBSおよび0.1% BSAを含む28.3ml PBSを含有するシミュレートされた緩衝剤を２つの管の各々に添加した。２００μlの染色された精子(30 x 106 精子細胞)を各管に添加し、室温にて、２０分間インキュベートした。精液混合物の３つの9ml アリコートを、遠心分離のために、２つの管の各々から得た。２つの試料の各々からの１アリコートを次の速度:550g; 650g; および 750gの各々にて、15ml遠心分離管において、７分間、遠心分離した。遠心分離の間の温度は22℃であった。遠心分離直後、上澄みを10ml ピペットで除去し、ペレット中に約200-300μlの上澄みを残した。ペレットを、7.0のpHを有する10%(v/v) 卵黄を有する200μlのTCAで再懸濁した。仕分け前後の精子運動性を、位相コントラスト顕微鏡下で観察した。２つの雄牛のうちの１つからの遠心分離後試料において、ひどい精子凝集が見られた。５０μlの固定剤(3.4%クエン酸ナトリウム中の0.1%グルタルアルデヒド)を、各上澄みおよびペレットに添加して、濃度決定のために精子を固定する。回収率を、遠心実験I記載の様式に従って決定した。
結果を図90に示す。結果は、550gと比べて、650gにて、精子細胞の改善された回収率を示す。しかしながら、650gおよび750gの間の回収率にはほとんど差がなかった。遠心分離機の速度を変動することによって生じる精子細胞運動性において有意な差はなかった。
遠心分離機実施例III
遠心分離機実施例IIIについて、遠心分離機実施例IIの手順を、異なる日に、同じ３頭の雄牛で実質的に繰り返した。結果を図91に示す。結果は、750gと比べて、650gでの回収率にほとんど差がないことを確認する。
遠心分離機実施例IV
精液を、２つの異なる日に、２頭の異なる雄牛から収集した。精液を、上記の様式で、移し、評価した。生の精液の精子濃度に基づき、精子をトリス-クエン酸(TCA, pH 7.3)+10mM ピルビン酸で150x106 精子/mlの濃度まで希釈した。精子を、41℃にて、20分間、10μM Hoechst 33342で染色した。染色後、 染色された精子を含有する267μlの溶液を、次のシミュレート緩衝液: 10%(v/v) 卵黄を含む 2ml PBS; および0.1%(w/v)ウシ血清アルブミン(BSA)を含む37.733ml PBSの添加によって、1x106 精子/mlの濃度まで希釈した。染色された精子およびシミュレート緩衝剤を室温にて、少なくとも20分インキュベートした。４つの9ml アリコートを染色された精子および各雄牛から得られたシミュレート緩衝混合物から得た。第１の雄牛からの４つのアリコートを、次:
(1) 第１のアリコートにつき、700gで7分;
(2) 第２のアリコートにつき、700gで10分;
(3) 第３のアリコートにつき、650gで10分;および
(4) 第４のアリコートにつき、650gで 7分
の順序で遠心分離速度および持続時間の変動する組合せにて、遠心分離した。
第２の雄牛からの４つのアリコートを、次:
(1) 第１のアリコートにつき、700gで10分;
(2) 第２のアリコートにつき、700gで7分;
(3) 第３のアリコートにつき、650gで10分;および
(4) 第４のアリコートにつき、650gで 7分
の順序で遠心分離速度および持続時間の変動する組合せにて遠心分離した。
全遠心分離を、22℃にて、スイングヘッド遠心分離機(Allegra 6R, Beckman Coulter Inc. Fullerton, CA)中の15ml 遠心分離管で行った。農場での精液収集およびラボでの遠心分離の間の時間間隔は、4-5時間であった。遠心分離直後、上澄みを10ml ピペットで除去し、各ペレットで、〜250 μl 上澄み残した。ペレットを、250 μlのダルベッコのPBS(pH 7.0)中で再懸濁した。精子運動性および進行性運動性を、染色後であるが、遠心分離前および再び遠心分離後に、Hamilton-Thorn運動性アナライザー(試料当たり２つのスライド;スライド当たり２つのチャンバー)を用いて観察した。精子濃度は、予めフリーザーに入れられたプレ-遠心染色精子およびシミュレート緩衝液混合物の100 μl アリコート、および90 μl固定剤（3.4%クエン酸ナトリウム中0.1%グルタルアルデヒド）と混合した再懸濁ペレットの10 μl アリコートの血球計測定によって決定した。回収率を、遠心分離機実施例Iでのように決定した。結果を図92および93に示す。
データは、> 85%の精子が650gまたは700gでの7または10分(図92)間の遠心分離に回収できることを示す。しかしながら、回収率は、700gにて僅かに良かった(95%)。全処理における(遠心分離前と比較した)遠心分離後の運動性の減少は、遠心分離力のストレスに耐えられなかった死／異常／脆い精子の存在のためであろう。精子運動性は、全処理において、10-14%(図93)減少した。650gでの7分間の精子運動性(14%)のより大きい減少は、650gでの遠心分離が700gの後に実施されたため、シミュレート緩衝剤への精子のより長い暴露のためかもしれない。遠心分離は、精子の進行性運動性にいずれの悪影響も示さず、むしろ2-3%の改善があった。
遠心分離機実施例V
精液を、２つの異なる日に、一頭の雄牛から収集した。精液を評価し、Hoechst 33342で希釈し染色し、さらに、遠心分離機実施例IV記載のように、シミュレート緩衝剤中で希釈した。染色された精子およびシミュレート緩衝混合物の４つの9ml アリコートを、２つの精液試料の各々に対して入手した。第１の試料からのアリコートを、次:
(1) 第１のアリコートに対して、750gで10分;
(2) 第２のアリコートに対して、750gで7分;
(3) 第３のアリコートに対して、700gで10分; および
(4) 第４のアリコートに対して、700gで7分
の順序で、次の遠心分離速度および持続時間の組合せのうちの１つにて、遠心分離した。
第２の試料から得られたアリコートについて、遠心分離速度および持続時間の組合せは同じであったが、順序を次のように修飾した:
(1) 第１のアリコートに対して、750gで7分;
(2) 第２のアリコートに対して、750gで10分;
(3) 第３のアリコートに対して、700gで7分; および
(4) 第４のアリコートに対して、700gで10分。
遠心分離を、22℃にて、スイングヘッド遠心分離機(Allegra 6R, Beckman Coulter Inc. Fullerton, CA)中の15ml 遠心分離管において実施した。農場での精液収集およびラボラトリーでの遠心分離の間の間隔は、第１の試料に対して、約6.5時間、第２の試料に対して約4時間であった。遠心分離処理、つまり上澄みの除去後、ペレットの再懸濁、精子濃度の決定、およびHamilton-Thorn運動性アナライザーを介する運動性予測を、実施例IV記載と同じ手順に従い実施した。結果を図94および95に示す。
高度に希釈された懸濁液中の精子集団の> 85%が、700gまたは750gで、7分または10分で回収することができることを、結果は示す(図94)。g力の750gまでの増加は、回収率を有意に改善しなかった。遠心分離機実施例IVにおける場合がそうであったように、(遠心分離前と比較した)遠心分離後の運動性の減少は、全処理において観察された。現在の実験において、精子運動性は13-20%減少し(図95)、これは、遠心分離機実施例IVにおいてより少し高かった。変動は、精液試料および１つの複製における精液収集から遠心分離までの時間間隔(6時間)の変動のためであり得る。実施例IVにおいて説明されるように、低速遠心分離(700xg, 7または10分間)での精子運動性の減少(約20%)は、それらが750g 遠心分離後遠心分離された時の、シミュレート緩衝剤への精子のより長い暴露のためかもしれない。進行性運動性の低下は、無視できる程度であった(1-5%)。
B.二次遠心分離
上澄み中に失われかねない精子を回収するために、ペレットから分離された後、上澄みを遠心分離することが可能である。特定の理論によって制限されずに言えば、出願人らは、ペレット/上澄み間期が、精子のペレットへの動きを妨げると考える。ペレットを上澄みから分離することによる間期の除去によって、上澄みをさらに遠心分離して、上澄みに留まって第２のペレットを形成し得た精子細胞を生じるだろう。第２のペレットを、再懸濁して、第１のペレットからの再懸濁された精子に添加することができる。
C.濾過
上澄み中の精子細胞の喪失を避けるために使用できる別の濃縮方法は、濾過である。図96に示されるように、１つの例示的な具体例に従い、フィルター2415を収集容器2403に組み込む。フィルターの穴のサイズは、望ましくは、約0.2-1ミクロンの間である。また、フィルターは、デプスフィルター(例えば、精子テイルが捕らえられかねない曲がりくねった経路を有するフィルター)でないことが望ましい。むしろ、フィルターは出来る限り薄いのが望ましい。例えば、フィルターの厚みは、50μmないし500μmの範囲であるのが望ましく;より望ましくは、フィルターの厚みは75μmないし250μmの範囲であり; 最も望ましくは、フィルターの厚みは100μmないし150μmの範囲である。低レベル真空2417が、液滴33が収集される時に、フィルターを介して流体を除去するように適用される。精子細胞に損傷を与えることを避けるために、低レベル真空(水銀20インチ未満、例えば、水銀15インチ)を使用するのが重要である。１つの具体例において、真空は、流体除去速度が、約1.0ml/15 秒であるのに十分に低い。本発明のもう１つの具体例に従って、真空は断続的に適用されて、精子細胞に回収する機会を与える。さらにもう１つの具体例において、フィルター2415は、精子細胞と適合性があるが、それらに対して結合親和性を有しない材料で構築される。仕分けの完了時、約80-90%の流体がフィルターを通して除去されているだろう。しかしながら、精子細胞が濃縮されたスラリー2405中に存在するのに十分な流体(約10-20%)が残り、それにより、精子細胞がフィルターケーキを形成するのを防ぐ。濃縮された懸濁液は、例えば図97に示されるように、もう１つの容器に移されてもよい。カニューレチップフィルター2411を有するシリンジメカニズム2409を使用して、この容器2419から、いくらかの残りの液体を除去することができる。しかしながら、精子細胞がフィルター2411上にケーキ形成するのを防ぐのに十分な流体が、容器中に残される。同じ考えが、収集容器中のフィルター2415として、カニューレチップフィルター2411に適用される。従って、カニューレフィルター2411の穴のサイズは、望ましくは、約0.2ないし1.0ミクロンの範囲であり、カニューレフィルターは、精子テイルがフィルター中の曲がりくねった経路に捕まるのを避けるために、比較的薄い。例えば、Spectrum Laboratories, Inc. of Rancho Dominguez, CAから商業的に入手可能なDynaGard（登録商標）中央ポリプロピレンファイバーシリンジチップフィルターをカニューレチップフィルターに対して使用することができる。図98に示されるように、再懸濁流体2413はカニューレ-チップフィルターから流されて、フィルター表面にくっついているかもしれない細胞を、スラリーへと洗い戻す。再懸濁流体は、ある量の濾過された流体および／または適当なエキステンダーを含み得る。フィルターから精子細胞を除去するのに十分なある量の再懸濁流体が、フィルターを通して洗い流された後、さらなる再懸濁流体を、所望により、添加してもよい。再懸濁流体の総量は、濃度を所望の濃度(例えば、約20 x 106 精子細胞/ml)に持ってくるように選択される。従って、この具体例の濾過工程は、収集容器におけるフィルターの使用、カニューレフィルターを用いる濾過、所望の濃度を得るための再懸濁を含む三段階プロセスである。
別の二段階濾過プロセスにおいて、上記の三段階プロセスの第１および第２段階を、全流体の除去がカニューレフィルターを通して行われるように組み合わされる。このプロセスにおいて、仕分けられた精子細胞は、フィルターを有しない収集容器に向けられる。流体は、カニューレ-チップフィルター2411を介して適用される上記のような低真空および／または間欠的真空によって除去される。精子細胞が濃縮されたスラリー中にある時、例えばエキステンダーのような再懸濁流体は、カニューレフィルターを通して洗い戻されて、精子細胞の所望の濃度を得る。
濾過実施例I
濾過実施例Iは、本発明の三段階濾過プロセスによる濃縮後の精子細胞の回収率および運動性を示す。精液試料を三頭の雄牛から収集し、上記の試料調製セクションで供されるように評価した。３つの精液試料のうちの１つは、最低初期条件質基準に満たなかったため、不適当であった。２つの残りの試料を、150 x 106 精子細胞/mlの濃度を得るのに必要なある量のTCA(pH 7.3)で希釈した。５０００を、２つの15ml 試験管の各々に添加した。６７ul精液試料(約10 x 106 精子細胞)を各試験管に添加し、室温にて２０分間インキュベートした。図99を参照すると、真空ポンプ2427を使用して、負圧を適用して、フィルター2425を介して、希釈された精液2423の４ml アリコートを引き出した。濾液2429をシリンジ 2421中に収集した。濾過後、フィルター上の精子細胞を、15ml管中の1ml TCA緩衝剤で洗い戻した。精子運動性を視覚的に評価した。濾過前後の試料を、固定剤(3.4 クエン酸ナトリウム中0.1 % グルタルアルデヒド)と混合して、精子細胞を固定した。精子濃度を血球計を用いて決定した。精子細胞の総数を、精子細胞の濃度によって掛けられた容量に基づき、計算した。回収率を、濾過前のアリコート中の精子細胞の総数によって分けられた洗い戻された部分中の精子細胞の総数として計算した。工程を、異なるフィルターで繰り返した。実験は、次:(1)1.0μm PTFE(FTPEではない)膜ディスク(シリンジ) フィルター(Pall Corporation, Life Science Group, Ann Arbor, MIから入手可能, Cat # PN4226T or VWR, Batavia, IL, Cat. # 28143-928);および(2) 0.8 SFCA(無仮面活性剤酢酸セルロース) 膜ディスク(シリンジ) フィルター(Corning, Inc., Corning, NY, Cat. # 431221; VWR Batavia, IL, Cat. # 28200-028)のフィルターの両方をテストした。結果を図101に示す。PTFEフィルターと比較して、より多くの精子を、酢酸セルロースフィルターで回収した、つまり酢酸セルロースの低い蛋白質結合親和性のため67対33%。回収された精子の視覚的な運動性は、63%(PTFE)ないし68%の範囲であった（酢酸セルロース）。
濾過実施例II
濾過実施例IIは、本発明の二段階濾過プロセスによる濃縮後の精子細胞の回収率および運動性を示す。精液試料を、三頭の雄牛から収集し、上記の試料調製セクションで供されるように、評価した。３つの試料を150 x 106 精子細胞/mlの濃度を得るのに必要なある量のTCA(pH 7.3)で希釈した。10% 卵黄を含む 1.5mlのPBSおよび0.1% BSAを含む28.3mlのPBSを、50 試験管の各々に添加した。２００μlの精液試料(約30 x 106 精子細胞)を各試験管に添加し、室温にて２０分間、インキュベートした。図100を参照し、シリンジ2431を使用して、負圧を適用して、フィルター2435を通して各試験管から希釈された精液2433の6ml アリコートを吸い取った。フィルターを、フィルターホルダー2437(Millipore Corporation, Billerica, MA Cat # SX0002500からのSwinnex フィルターホルダー)に入れた。濾過後、濾過ホルダー2437を、フィルターホルダーを無傷のままで維持しながら、シリンジおよび管から外した。フィルター上の精子を、フィルターアセンブリをひっくり返し、15ml 試験管中の先端にチューブの小片を有する3ml シリンジを用いて1mlのTCA緩衝液を逆フラッシュすることによって収集した。精子運動性を視覚的に評価した。濾過前後の試料を、固定剤(3.4 クエン酸ナトリウム中0.1 % グルタルアルデヒド)と混合して、精子細胞を固定した。精子濃度を血球計を用いて決定した。精子細胞および回収率の総数を、濾過実施例1で特定されるように計算した。プロセスを、２度繰り返して、異なるフィルターをテストした。実験は、次:(1) a 0.2μm テフロン膜フィルター(X-Partek, P.J Cobert Associates Inc. St. Louisから入手可能 Cat. # 944106; および(2) 0.8 酢酸セルロース膜フィルター(Millipore Corporation, Billerica, MA Cat. #AAWP 02500)のフィルターの両方をテストした。結果を図102に示す。両方のフィルターにおいて、精子の回収率は低かった(〜25%)。実施例Iでのように、テフロンフィルターにおいて低かった。しかしながら、酢酸セルロースフィルター中の洗い戻された精子の低回収率および視覚的運動性は、異なる販売業者によって使用される材料および／またはフィルターホルダー/アセンブリと結合する精子の能力のためかもしれない。
D.密な媒体の濃度
収集された精子を濃縮するもう１つの別法は、高密度媒体中の精子細胞の浮遊に依存する。この方法に従って、高密度媒体を、収集された精子細胞に添加して、懸濁液の比重を約1.3以上に上げた。例えば、Percoll（登録商標）およびIsolate（登録商標）といった商品名下で入手可能なコロイド状シリカ懸濁液を使用して、懸濁液の比重を増加してもよい。精子細胞は、懸濁液の頂部まで浮遊し、そこでそれらは、懸濁液の増加した比重のため、すくい取るか、さもなければ収集される。再懸濁流体を、表面から収集された細胞に添加して、最終濃度を約20 x 106 精子細胞/mlまで持ってくる。いくつかの懸濁流体を、高密度媒体の添加前に上記の濾過方法のうちの１つによって除去して、所望の特異的な重力を得るのに必要な高密度媒体の量を減らしてもよい。
低温拡大
A.凍結保護
一旦、精子が仕分けられ、収集容器に収集されると、それらを雌の哺乳類を受精させるのに使用することができる。これは、精子のさらなる処理をほとんど要さず、ほとんど直ぐに生じることができる。同様に、また、精子を、後日の使用のため、冷却したり、冷凍してもよい。そのような例において、精子は、さらなる処理から利益を得て、冷却および冷凍の結果としての生存性または解凍後運動性に対する衝撃を最小化することができる。
一般的には、低温エキステンダーは、緩衝剤または緩衝液、蛋白質源、および抗凍結剤を含む。低温エキステンダーにおいて使用可能な緩衝剤および緩衝液の例は、試料収集および伸長に関して上記で開示する。典型的には、これらの緩衝剤は、約0.001Mないし約1.0Mの濃度であり、約4.5ないし約8.5、好ましくは約7.0のpHを有する。
もし含まれるなら、蛋白質源を添加して、細胞に支持体を提供し、収集容器で細胞の接触を和らげてもよい。蛋白質源は、精子細胞の生存性と干渉せず、使用される特定の緩衝剤または緩衝液と適合性のあるいずれの蛋白質源であってもよい。一般的な蛋白質源の例は、乳(加熱均質化およびスキムを含む)、乳抽出物、卵黄、卵黄抽出物、大豆蛋白質および大豆蛋白質抽出物を含む。そのような蛋白質は、約10%(v/v)ないし約30%(v/v)、好ましくは約10%(v/v)ないし約20%(v/v)、より好ましくは約20%(v/v)の濃度で見い出すことができる。乳は緩衝剤または緩衝液と併用してもよいが、一般的には、乳は、それ自体、緩衝剤または緩衝液の同じ目的を果たし得るため、乳はその不在下で使用される。そのような例において、低温エキステンダーは、約80%(v/v)ないし約90%(v/v)の乳を含有するだろう。
抗凍結剤は、好ましくは、低温エキステンダーに含まれて、冷衝撃を緩めるかまたは防ぐ、あるいは精子の受精率を維持する。多くの抗凍結剤が当該分野で知られている。所与のエキステンダーとの使用に適した抗凍結剤の選択は、変動し得、冷凍される精子が得られた種によって決まる。適した抗凍結剤の例は、例えば、グリセロール、硫酸ジメチル、エチレングリコール、プロピレングリコール、トレハロース、Triladyl（登録商標）およびその組合せを含む。もし含まれるなら、一般的には、これらの抗凍結剤は、約1%(v/v)ないし約15%(v/v)の量、好ましくは約5%(v/v)ないし約10%(v/v)の量、より好ましくは約7%(v/v)の量、最も好ましくは約6%(v/v)の量で、低温エキステンダー中に存在する。
１つの特定の具体例において、低温エキステンダーは、水、Triladyl（登録商標）、卵黄、およびピルビン酸を含む。さらにもう１つの具体例において、低温エキステンダーは、75mLの水中に、25g Triladyl（登録商標）、25g 卵黄、および10mM ピルビン酸を含む。
所望により、低温エキステンダーは、精子生存性または運動性に有益であり、冷凍保存の有害な副作用を防ぐまたは緩める、ある範囲の添加剤を含んでもよい。そのような添加剤は、例えば、エネルギー源、抗生物質、または細胞内および／または細胞外で、酸化／還元反応を調節する組成物を含んでもよく、これらの各々は、試料収集および希釈に関して上記で論議される。そのような添加剤を、それに従って、低温エキステンダーに添加してもよい。
B.仕分けられた精子細胞の冷凍保存
ほとんどの場合において、上記のように仕分けられた精子細胞を、直ちに人工受精に使用することは可能ではないだろう。特に、商用精子仕分け操作の場合において、仕分けられた精子細胞は、それらが人工受精に使用される前に、仕分けられおよび／または移送されなければならない。これは、大抵、精子細胞の冷凍保存を要する。仕分けられた精子は、細長いシリンダー(畜産業では、「ストロー」として知られる)にロードして、冷凍保存して、移送および貯蔵の間、精子を保存してもよい。冷凍保存された精子細胞を、液体窒素中に、長期間保存することができる。冷凍保存された精子を使用するために、ストローを熱した水漕中に浸漬して、精子を解凍すればよい。次いで、ストローを、雌の動物を受精させるのに使用される人工受精ガンにロードする。いくつかの予防措置をとって、冷凍保存の間、精子細胞を保護しなければならない。さもなければ、精子細胞は、(5-10%の解凍後運動性率の低さによって示されるように)人工受精での使用に適さないほどに損傷されるだろう。
慣用的な冷凍保存方法は、順次に、蛋白質源(例えば、卵黄)を添加し、約4-5℃の温度まで精子を冷却し、抗凍結剤(例えば、グリセロール)を添加し、精子および抗凍結剤を、精子細胞に抗凍結剤と平衡を保たせるのに十分な時間、約4-5℃の範囲で、一定の温度に維持し、次いで、貯蔵のために、-196 ℃の液体窒素中に精子細胞を浸漬することによってのように精子を過冷却することを含む。当業者は、蛋白質源の目的が、精子細胞が最も冷衝撃に感受性のある温度である約14℃ないし約8℃に冷却する時に、損傷から精子を保護することであることを認識するだろう。対照的に、抗凍結剤は、0℃以下の温度にて、損傷から精子細胞を保護する。冷凍保存に関与する温度が、フリージング以下であっても（用語「フリージング」は、冷凍保存を記載するのに使用されることがある）、当業者は、冷凍保存された精子が実際に冷凍でないことが分かるだろう。正確には、冷凍保存された精子は過冷却状態にある。精子細胞および抗凍結剤が一定の温度で維持される慣用的な時間は、何れの場所においても60分以上何時間までも継続することができる。慣用的な方法を用いて冷凍保存を完了する全体の時間は、一般的には、４時間を超える。さらに、最大50%の精子細胞が、慣用的な冷凍保存プロセスにおいて死滅すると考えられる。本発明のいくつかの具体例に従って、慣用的な方法を用いて、精子は冷凍保存されるが、本発明の他の具体例は、改良された冷凍保存法を使用して、冷凍保存に必要な時間を減らしおよび／または冷凍保存された精子の健康を改善する。
図103は、本発明に従って、精子を冷凍保存する改良された方法の１つの例示的な具体例の段階を概説するワークフロー図を示す。工程2501にて、仕分けられた精子細胞を含有する溶液の濃度は、標的消費者(例えば、畜産関連)によって使用される基準によって、約100万-4000万精子/mlの範囲であるように調整される。例えば、精子濃度は、約2000万ないし2400万精子/mlの範囲であるように調整されてもよい。精子濃度の調整は、再懸濁流体、緩衝剤および／またはエキステンダーの上記のような濃縮された精子への添加を含んでもよい。工程2503にて、抗凍結剤(例えば、グリセロール)は、精子が冷却される前に添加される。精子細胞は、抗凍結剤と接触すると直ぐに、抗凍結剤と平衡を維持し始める。工程2505にて、蛋白質源(例えば、卵黄)は、上記のように、精子細胞を含有する溶液にも添加される。
精子細胞溶液、蛋白質源、および抗凍結剤は、工程2507にて、慣用的なローディング機械を用いて、慣用的な0.5または0.25ml 人工受精ストローにロードされる。当業者は、精液をストローにロードするのに使用することができる多くの慣用的な装置および技術を知っているだろう。例えば、ここに引用して援用するCassou, et al.に対する1993年10月5日に発光された米国特許第5,249,610号は、使い捨てのインジェクターノズルを用いて、ストローのウシ血清による充填に関する指示を提供する。さらに、ストローを充填するための器具は、Verona WIにあるMinitube of Americaから商業的に入手可能である。これらのいずれかまたは同様の慣用的なローディング方法および装置を使用して、仕分けられた精子細胞をストローにロードすることができる。
ロード後、精子細胞を、工程2509にて、維持温度まで冷却する。一般的には、維持温度は、次:高すぎる温度(例えば、 10℃)で精子細胞を維持すると、冷衝撃から不要な損傷を生じ得る;精子細胞の抗凍結剤(例えば、グリセロール)との平衡は、4-5℃の範囲の温度で、最も活動的であると考えられる;およびholding 精子細胞を低すぎる温度(例えば、 < 0°)で維持することは、精子細胞に損傷を与えると考えられることを考えて選択するべきである。従って、１つの具体例に従って、維持温度は0-8℃の範囲である。より望ましくは、維持温度は2-6℃の範囲である。さらにより望ましくは、維持温度は4-5℃の範囲である。もう１つの具体例において、この工程2509に使用される冷却速度は、精子細胞への損傷を最小化するように選択される。例えば、冷却速度を(例えば、実質的に一定に)制御して、均一な冷却を提供し、精子が温度衝撃から損傷を受けるのを防いでもよい。また、冷却速度は、膜損傷を生じる前に、代謝を減らすのに十分に迅速に、温度衝撃から損傷を受けない程度にゆっくりと、精子を冷却すべきである。精子細胞を含有するストローを、プログラム可能なフリーザー(例えば、Verona, WIにあるMinitube of Americaから商業的に入手可能なIceCube 1810CDフリーザー)に入れて、冷却することによって、冷却速度を制御することができる。１つの具体例に従って、プログラム可能なフリーザーは、精子を室温（典型的には約22および24℃の範囲）から、0.1および0.3 ℃/分の一定の冷却速度にて冷却する。より望ましくは、冷却速度は、約0.15および0.25 ℃/分の範囲である。さらにより望ましくは、冷却速度は約0.2 ℃/分である。もう１つの具体例において、精子が、約90分で、初期温度から維持温度へと冷却されるように、冷却速度を選択する。さらにもう１つの具体例において、冷却速度は、精子を、約90分で一定の冷却速度にて、初期温度から維持温度へ冷却するように選択される。上記で呼ばれる冷却速度は、実際には、プログラム可能なフリーザーのチャンバーの冷却の速度を指すが、ストローの薄い壁および長く薄い形(例えば、約5.25インチの長さ、3mm未満の直径、および約0.15mmの壁の厚み)およびストローの伝導性質のため、精子細胞および冷却チャンバーの間の温度差は有意ではない。
精子細胞が維持温度まで冷却された後、工程2511にて、それらは、抗凍結剤との平衡の実質的な完了が可能な時間、その温度またはそれに近い温度で維持される。例えば、上記のプログラム可能なフリーザーをプログラムして、時間の間、一定の温度にて、精子細胞を維持することができる。本発明のもう１つの具体例に従い、冷却プロセスの間、精子が既に抗凍結剤と平衡を維持しているため、慣用的な方法と比較して短縮された期間、精子細胞は維持温度にて維持される。例えば、時間は約10および60分の範囲であってよい。より望ましくは、時間は、約20および40分の範囲である。さらにより望ましくは時間は約30分である。もう１つの具体例において、時間は60分未満である。さらにもう１つの具体例において、時間は40分未満である。比較的短い維持時間は、商用精子仕分けプロセスにおいて、多くの利益を供する。まず、仕分け精子を加工するのに要する時間が減り、これにより、コストを節約できる。また、精子細胞は、0-8℃の範囲の温度にて、代謝プロセスを実行し、そうして、精子がこの温度で維持するのに必要な時間を減らすことで、精子細胞の健康を改善し、これは、人工受精成功率について懸念している動物畜産業者にとっての精子細胞の価値を増加させるだろう。
精子細胞が上記の時間、維持温度にて維持された後、精子細胞は、工程2513にて、精子冷凍保存のための臨界温度ゾーンに近い温度まで冷却される。当業者は、臨界温度ゾーンが氷血漿形成および浸透圧の変化が精子細胞を損傷するゾーンであることを知るだろう。この温度は、精子細胞が冷凍保存される溶液によって変動し得るが、臨界温度ゾーンは、一般的には-18および-35℃の範囲である。この臨界温度ゾーンは、約-18および-30℃の範囲であると報告される時もある。従って、本発明のさらにもう１つの具体例に従って、維持温度から、-18℃に近い温度(例えば、-15℃)までの温度まで精子細胞を冷却するのに使用される冷却速度は、精子の健康を保護するように選択される。考慮すべき関連した要因は、精子細胞が、この期間、まだ抗凍結剤と平衡を維持しているという事実、精子がまだなんらかの代謝機能を行っているという事実、および精子がまだ迅速な温度変化にいくらか感受性であるという事実を含む。再び、冷却速度は、上記のプログラム可能なフリーザーにプログラムすることができる速度のような、制御された速度であるのが望ましい。より望ましくは、精子を維持温度から約-18℃に近い温度まで冷却するのに使用される冷却速度は、一定の冷却速度である。従って、本発明のもう１つの具体例に従って、約1.0-5.0 ℃/分の範囲の冷却速度にて、維持温度から約-15℃まで冷却される。より望ましくは、冷却速度は、約2.0ないし4.0 ℃/分の範囲である。さらにより望ましくは、冷却速度は約3.0 ℃/分である。
工程2515は、臨界温度ゾーンを介して、精子細胞を迅速に冷却して、精子細胞がその中にある時間を制限することを含む。従って、本発明の１つの具体例に従って、臨界温度ゾーン(例えば、 -18℃ないし約 -30℃)を介する冷却速度は、維持温度まで精子細胞を冷却するのに使用される冷却速度および臨界温度ゾーンに近い温度まで精子細胞を冷却するのに使用される冷却速度よりずっと早いように選択される。従って、より急な冷却速度は、望ましくは、約8-40℃／分である。より望ましくは、より急な冷却速度は、約8-12℃／分である。最も望ましくは、より急な冷却速度は、約10℃／分である。より急な冷却速度が使用される温度範囲は、臨界温度ゾーンを越えて延びてもよい。従って、本発明のさらにもう１つの具体例において、精子細胞は約-15℃ないし約-40℃の上記のより急な冷却速度のうちの１つで冷却される。さらにもう１つの具体例において、精子細胞は、約-15℃ないし約-80℃の上記のより急な冷却速度のうちの１つで冷却される。精子を、より急な速度で、臨界温度ゾーンを介して冷却する工程は、上記のプログラム可能なフリーザーで達成することができる。
精子細胞が臨界温度ゾーン(例えば、-80℃まで)以下に冷却された後、仕分けられた精子を含有するストローは、工程2517にて、液体窒素(-196℃)中に浸漬されて、仕分けられた精子細胞の最大有用な寿命を供する。冷凍保存された精子を保存するための液体窒素の使用は、仕分けられていない精子の状況で、畜産業において広く知られている。従って、当業者は、本明細書中で詳細に論議する必要のない液体窒素中での精子の移送および保存を含む技術を知っているだろう。慣用的な容器は、液体窒素中の人工受精ストローのバルク量の長期間保存に提供するのに入手可能であり、より小さく、より持ち運びに便利な容器が、消費者への移送および／または冷凍保存された精子で受精される一頭以上の雌の動物を有する農場への移送のための液体窒素中の人工受精ストローの保存を提供するのに入手可能であることを記せば十分である。
本明細書中に記載される冷凍保存方法の１つの利点は、冷凍保存が慣用的な方法に従って必要であるより短時間で完了できることである。恐らく関連して、本発明による冷凍保存のための運動性の低下は、下記で論議される例によって示されるように、ほんの約5-11%である。従って、本発明に従って冷凍保存された精子細胞が、約50秒間、37℃の水中で解凍された後、50%以上(例えば、約60%)の運動性を有することを示すテストによって示されるように、本発明による冷凍保存は、精子細胞の健康を保存する。上記のように、精子運動性は、自動機械(例えば、Hamilton Thorn ResearchからのIVOS精子アナライザー)または視覚検査によって分析することができる。
上記の冷凍保存方法は、商業スケールの精子仕分けプロセスにおいて使用されると考えられていることは注意するべきである。従って、本発明の１つの具体例に従って、本明細書中記載の本発明の方法の工程は、仕分けられた精子細胞のバッチに対して同時に実施されて、それらの健康を保存する様式で、精子細胞の全バッチを直ぐに冷凍保存する。例えば、下記のマルチチャネルフローサイトメトリー装置を使用することによって、約20分で装置の収集システムにおいて、約840 x 106の仕分けられたX染色体-担持精子細胞を得ることが可能である。これは、数ダースのストローを充填するのに十分な精子細胞である。さらに、バッチは、２以上の異なる仕分けサイトメーターによって組み合わされた精子細胞を含み得る。上記のように濃縮された後、精子細胞は、いずれかの数のストローにロードされ、バッチとして冷凍保存される。例えば、本発明の具体例によって、(蛋白質源 および抗凍結剤の両方を含む) エキステンダーを、精子細胞のバッチに添加するのには、約5分かかり、自動ローディング機械を用いて人工受精ストローに精子細胞をロードするのには約15分かかる。バッチ中の全ストローは、プログラム可能なフリーザー内で、同時に冷却される。さらに、いくつかのプログラム可能なフリーザーの能力によって、何千もの人工受精ストローの同時冷凍保存が可能である。例えば、上記で囲繞されるIceCube 1810CDフリーザーは、2,500の0.5mlストローまたは3,800の0.25mlストロー以上を同時に冷凍保存する能力を有する。従って、複数のバッチが得られるまで、冷却工程を開始するのを待つことができる。別法として、複数のバッチを、平衡して複数のマルチチャネルフローサイトメトリー機械(下記参照)を動かし、同時にプログラム可能なフリーザーで一緒にそれから得られた複数のバッチを冷却することによって、実質的に同時に入手することができる。本発明の１つの具体例において、精子細胞を室温から過冷却状態まで冷却し、それらを液体窒素(-196℃)中に浸漬するのには、220分かからない。もう１つの具体例において、過冷却期間は190分未満である。さらにもう１つの具体例において、過冷却期間は150分未満である。
当業者は、実質的な修飾が、本発明の範囲から逸脱せずに、前述の例示的な方法になされてもよいことを認識するだろう。例えば、精子細胞は、人工受精ストロー以外の容器内で冷凍保存されてもよい。同様に、温度を変化するまたは維持することを含む方法の工程を、例えば、水浴、液体窒素ベーパー、および慣用的なプログラム可能なまたはプログラムできないフリーザーを含むいずれかの適当な手段によって実施してもよい。さらに、多種多様な物質または物質の組合せを、本発明の範囲から逸脱せずに、蛋白質源および／または抗凍結剤として使用することができる。これらの物質は、緩衝剤、エキステンダー、抗凍結剤、シース流体、および収集流体に関する論議と関連して上記にリストした物質および物質の濃縮物を含む。さらに、方法のいくつかの工程の順番番は、本発明の範囲から逸脱せずに、変動し得る。図95は、抗凍結剤は、仕分けられた精子の濃度が調整された後に添加されることを示すが、本発明の範囲から逸脱せずに、濃度が調整される前に抗凍結剤を添加することができることも考えられる。例えば、抗凍結剤は、収集流体中またはフローサイトメーターと関連して使用されるシース流体中に提供されてもよい。また、本発明のいくつかの利益は、精子細胞を部分的に冷却し、次いで抗凍結剤を添加することによって入手することができる。同様に、蛋白質源を添加される順序は、精子細胞が約14ないし8℃の温度範囲を通過する時に、蛋白質源がそれらを冷衝撃から保護するのに効果的である限り、変動してもよい。
冷凍保存実施例I
ウシ血清を、上記のように、収集し、移送し、評価した。各々が5mlのTCA緩衝液(pH 7.3)を含有する２つの試験管を、少なくとも５分間、２つの水漕のうちの１つに入れた。１つの水漕は、35℃の温度で、他の水槽は41℃であった。24℃で、精子を各管に添加して、各管での最終濃度が150 x 106 精子/mlになるようにした。２つの管を、各々、２つのアリコートに分け、これらを、それぞれの水槽に保管した。精子が、５分間、TCA緩衝剤と平衡を保った後、80μM Hoechst 33342を、35℃ アリコートのうちの１つおよび41℃ アリコートのうちに１つに添加した。Hoechst 33342の添加後、全４つのアリコートを、それぞれの水槽中で、20分間インキュベートした。インキュベーション後、試験管を水槽から除去し、室温(約25℃)にて、５分間放置した。次いで、各試験管の内容物を、20% 卵黄および6% グリセロール(v/v)(pH 7.0)を含有するTCA エキステンダーで、20 x 106 精子/mlの最終濃度まで希釈した。次いで、各試験管の内容物を使用して、0.5ml 人工受精ストローを充填した。４つのストローの各々を、プログラム可能なフリーザー(Minitube of America, WIからのIceCube 1810CDフリーザー)の各々に入れた。以下の冷却系列をプログラム可能なフリーザーにプログラムした:(1) -0.2 ℃/分にて22℃ないし4℃;(2) 4℃に30分間保持;(3) -3.0 ℃/分にて4℃ないし-15℃; および(4) -10.0 ℃/分にて-15 ℃ないし-80 ℃。 -80 ℃に達した後、ストローを、45分間、液体窒素(-196℃)中に浸漬した。次いで、ストローを50 秒間37℃水槽に浸漬して、解凍した。精子運動性を、冷凍保存前後の両方で位相コントラスト顕微鏡下でチェックした。結果を図104に示す。解凍後の運動性は、一般的に、約60%であった。これは、冷凍保存前と比較して、ほんの約5-11%の運動性の低下を表す。変動の分析は、解凍後の精子運動性に対する41℃でのHoechst 33342またはインキュベーションのいずれかの有意な効果を全く示さなかった。
システムの操作
さて、フローサイトメトリーシステム9の全体的な操作813を、図82を参照し、精子細胞(例えば、ウシ精子細胞)の具体的関係で記載するが、記載は例示的なものであるだけであって、粒子の他のタイプを処理するのに、システムを使用することができることは理解されるだろう。
６つの第２反復ループに至る第１シリーズの工程は、システムの較正を含む。769の開始後、システムチェック771を実行して、なかでも、プロセッサー131またはプロセッサーが操作可能であることを確認する。もしエラーが、３度の失敗したシステムチェック775後に検出されれば、ユーザーの干渉773が要求される。もしシステムチェックが陽性なら、マイクロプロセッサーは、システムを、ビーズまたはウシ核のような適当な流体でノズルシステムを洗い流す777ように方向付け、システムを通って検出パラメーター(図72の739参照)を初期設定し、システムが許容される質制御内で操作していることを確認する。これは、システムが十分に試料を識別することができることを確認するために、システムの感受性および精度をテストするための制御材料の評価を含む。もし質制御が、３度の試み775後確認されなければ、ユーザーの介入773が要求される。
もし質制御が質制御の許容されるレベルを示せば、試料781は吸引され、仕分けられる試料の一部またはアリコートは、質のためにチェックされる783。試料質は、試料の質因子(Q-因子)の計算によって決定することができる。例えば、細胞のタイプは、試料の最初のアリコート中で検出され得る。この検出の間、初期設定された検出パラメーター(741)は、再度チェックされ、初期識別パラメーター(745)が生じる。もしアリコート中で検出された細胞のタイプが、試料が現在の基準に見合うまたはそれを超える(例えば、試料が識別されて、特定の純度または運動性を得ることができる、特に、処理のために入手可能な十分な生X細胞が存在する)ことと示せば、システムは操作を続ける。もし質制御が三度失敗すれば775、ユーザーの介入が要求される。
継続した操作は、６つの第２反復ループを用いる試料の残部の仕分け785を含む。ループの始めに、マイクロプロセッサーは、試料の仕分けが完了していない789ことを確認する。もし試料の仕分けが完了していれば789、マイクロプロセッサーは、入手可能であれば、次の試料781を吸引し続け、あるいは、もしさらなる試料が入手できなければ、仕分け操作を止める793。もし試料が完了していなければ789、マイクロプロセッサーは、まず、試料のX/Y識別をチェックして795、それが最適範囲内であることを確認する。つまり、上記のドリフト分析(図72中の761)が実行される。もしいずれかの変化がなされるなら、そのような変化は導入され、識別795が再びチェックされる。もし識別が、この時点でまだ許容不可能であれば、仕分けが止まり793、ユーザーの介入が要求される。
さもなければ、システムは、流体送達システムが最適範囲内である速度にて、流体および細胞を送達しているかを決定する801ように進む。この決定は、使用される制御方法のタイプによって決まる。高回収制御方法について、最適範囲は、純度を評価するまたは収集された集団のX/X+〜Xを見ることによって決定されるだろう。もし決定された純度が必要な純度レベルより高ければ、細胞のフィードインプット速度は、シリンジポンプ803に提供される速度制御シグナルを増加することによって増加される。これは、〜X細胞を含むより多くの同時細胞がX細胞と共に収集されるため、同時細胞を増加し、純度を減少させる傾向があるだろう。もし決定された純度が必要な純度より低ければ、細胞のフィードインプット速度は、同時細胞の周波数を減少する803ために、シリンジポンプに提供される速度制御シグナルを減少することによって減少される。従って、細胞インプット速度は、所望の純度、レベル例えば、収集された同定された〜X精子細胞の関数と比較して、収集された集団の決定された純度の関数である。
高純度制御方法について、最適範囲は、失われたX細胞、例えば捨てられたX/捨てられたX +収集されたXを計算することによって決定されるだろう。もし失われたX細胞の量またはパーセンテージが許容されるレベル未満であれば、細胞のインプット速度は、シリンジポンプ803に提供される速度制御シグナルを増加させることによって増加される。これは、X細胞を含むより多くの細胞が、Y細胞内で廃棄されるため、同時細胞を増加し、捨てられたX細胞の数を増加する傾向があるだろう。もし失われたX細胞の量またはパーセンテージが、許容されるレベルを超えれば、細胞のインプット速度は、同時細胞を減少するために、シリンジポンプ803に提供される速度制御シグナルを減少することによって減少される。従って、細胞インプット速度は、収集された集団中のX細胞の数、例えば、収集されていないX精子細胞の数の関数と比較して、捨てられた集団の決定された失われたX細胞の関数である。
もしこの修飾された速度が許容されれば805、システムは、もう１つのシステムチェック807に進む。もしシステムチェックが許容されれば807、仕分けが６つの第２ループで続く。もしそうでなければ、システムはリセットされる809。もしリセット後、システムが許容されない、またはもし改正されたフィード速度が許容されなければ811、仕分けが止まり793、ユーザーの介入が要求される773。
仕分けられた液滴流れは、収集システム2201によって収集される。X細胞の集団に仕分けられる液滴は、第１のインターセプティングデバイス2247の出口ウィンドウ 2245を通過して、第２のインターセプティングデバイス2249によってインターセプトされる。そこから、X細胞を含有する液滴は、収集容器2207へ流れる。他の液滴は、第１のインターセプティングデバイス 2247によってインターセプトされ、2805を採って廃棄に向けられる。もちろん、第１のインターセプティングデバイスによってインターセプトedされる液滴は、上記のように、保存されてもよい。適当な量のX-担持精子細胞が、収集容器に収集されると、仕分けは中断されて、収集容器2207中の精子細胞の濃縮を可能にすることができる。新たな収集容器を、第１のインターセプティングデバイス2247下に置いてもよく、または収集された流体を、異なる容器および置き換えられた収集容器に流し入れてもよく、次いで、仕分けは止めてもよい。収集された流体中の精子細胞を濃縮し、ストローにロードし、上記のように冷凍する。
操作の間の温度制御
プロセスを通しての温度制御を使用して、プロセスの結果を改善することができる。上記で既に論議したように、精子の温度は、プロセス中の様々な工程(例えば、染色および冷凍保存)の間制御することができる。本発明のいくつかの具体例において、方法の様々な工程を通して精子細胞の温度を制御して、改善された結果を達成する。
例えば、図105は、本発明による温度制御の方法の１つの具体例のワークフロー図である。収集時の精液試料の温度は、収集された動物の体温によって決定されるだろう。例えば、工程2601にて、ウシ血清試料は約37℃にて収集される。断熱容器を、精液試料の工程2603での収集箇所からラボへの移送に使用する。断熱容器は、精子の冷却を遅らせる。
工程2605での試料評価の間、温度を、収集温度以下であるが、精子細胞が膜損傷をこうむる未満のガラス転移温度に対応する温度を超えて維持する。例えば、温度を、約18-37 ℃の範囲で維持してもよい。もう１つの具体例にいおて、温度を、試料評価の間、約24-37℃の範囲で維持してもよい。特定の具体例において、精子細胞を、試料評価の間、約22-25℃の範囲の温度を有する環境に置く。ラボ到着時の精子の温度によって、それらを約22-25℃の範囲の温度を有する環境下に置く効果は、精子の冷却を遅らせ続ける、精子の温度を維持する、あるいは精子の温度を僅かに上昇させるかもしれない。１つの具体例において、温度は、染色セクションで論議したように、工程2607での染色のために上昇(例えば、40℃またはそれ以上まで）してもよい。もう１つの具体例において、染色工程の間の精子細胞の温度は、上記でも論議されるように、約20-40℃の範囲であってもよい。
工程2609にて、染色された精液混合物は、混合物がフローサイトメーターに導入される時間まで、水槽中で維持される。水槽の温度は、染色工程で使用される温度と同様であってもよい。１つの具体例において、水槽の温度は、約40-47℃の範囲である。もう１つの具体例において、水槽の温度は約20-37℃である。さらにもう１つの具体例において、水槽の温度は、約20-25℃の範囲である。１分および２時間の間のいずれかの時間の間、水槽中に維持した後、染色された精子細胞を、工程2611にて上記で論議したように、フローサイトメトリーによって仕分ける。濃縮を精子細胞の温度を有意に変化しない温度を有する環境中で行ってもよい。例えば、１つの具体例において、濃縮を、約20および25℃の範囲の温度を有する環境で行ってもよい。エキステンダー、蛋白質源、および抗凍結剤を、工程2615にて、濃縮された精子に添加する。次いで、工程2617にて、精子細胞を人工受精ストローにロードする。１つの具体例において、ロード工程は、精子細胞の温度を有意に変化しない温度を有する環境下で行う。最後に、工程2619にて、精子の温度を、上記で論議したように、冷凍保存の間、制御する。
もう１つの具体例において、精子細胞を、本発明の範囲から逸脱せずに、さらにより低い温度にて染色してもよい。例えば、比較的低温(例えば、約0℃ないし約8℃)にて、フローサイトメーターにおいて精子細胞を仕分けるのが望ましいかもしれない。これは、全体的な温度制御の修飾を要するかもしれない。まず。フローサイトメーターへの導入前に精子細胞を冷却する時、ガラス転移温度以下の温度での冷却衝撃から精子細胞を保護する卵黄および他の一般的な蛋白質源は、一般的には、フローサイトメーターの流体工学を汚すおよび／または詰まらせる傾向のあるそのような蛋白質含有物質として使用することができない。従って、例えば、精液流体のような純粋な精液中で見受けられる天然の冷却衝撃保護剤を利用するために、染色工程を実施する前に精子細胞を冷却するのが望ましい。冷却前に精子細胞を染色しようといういずれの試みも、純粋な精液を希釈し、冷却衝撃に対して天然の保護を減らす精子を保護するための緩衝剤の添加を要するだろう。
従って、約0℃ないし約8℃の範囲の温度で精子細胞を仕分けるための本発明の１つの具体例は、約8℃未満の温度を有する環境下に精子細胞を置いて、精子細胞を、染色前に約0℃ないし約8℃の範囲の温度まで冷却することを含む。どの方法を使用して、精子細胞を冷却してもよいが、冷却プロセスの間、精子細胞の早い温度変動に対して保護する方法を使用するのが望ましい。例えば、１つの具体例において、精子細胞を維持する容器を、室温の水槽中に入れ、これを、代わりに、約8℃未満の温度を有する環境下に置く。もう１つの具体例において、精子細胞の温度をモニターし、氷を水槽に添加して、さらに精子細胞を冷却する。染色工程は、染色混合物を約0℃ないし約8℃の範囲の温度に付すということを除いては、上記のように行ってよい。より低い温度のため、細胞を染色するのに必要なインキュベーション期間は、大幅に長い。一旦、精子細胞が8℃またはそれ以下まで冷却されると、それらを温めるのは避けるのが望ましい。従って、本発明のもう１つの具体例は、約0℃ないし約8℃の範囲の温度を有する環境下でフローサイトメーターを操作することである。同様に、本発明のもう１つの具体例は、約0℃ないし約8℃の範囲の温度を有する環境に取り囲まれた収集容器中の仕分けられた精子細胞を収集することである。本発明のさらにもう１つの具体例は、いずれかのエキステンダー、抗凍結剤、緩衝剤、蛋白質源、抗生物質、抗酸化剤、または他の添加剤を、約0℃ないし約8℃の範囲の温度にて添加することである。抗凍結剤の添加に関して、約0℃ないし約8℃の範囲の温度にて、精子細胞の仕分けがない時に添加されるとりも僅かに多く抗凍結剤を加えるのが望ましいであろう。従って、１つの特定の具体例において、7% グリセロール(v/v)を含有する抗凍結剤を、精子細胞が約0℃ないし約8℃の範囲の温度にて仕分けられた後、精子細胞に添加する。
約0℃ないし約8℃の範囲の温度からの精子細胞の過冷却は、一般的には、上記の冷凍保存セクションで記載された通りに進む。しかしながら、精子細胞は、抗凍結剤の添加後から過冷却の前の時間、約0℃ないし約8℃の範囲の温度で維持して、精子細胞が抗凍結剤と平衡を維持する時間を可能にする必要があるだろう。従って、１つの具体例に従って、精子細胞を、30分ないし約3時間の範囲の時間、抗凍結剤と平衡を維持させる。もう１つの具体例において、精子細胞を、1ないし2時間の範囲の時間、抗凍結剤と平衡を維持させる。もう１つの特定の具体例において、精子細胞を、約90分の時間、抗凍結剤と平衡を維持させる。
慣用的な温度制御装置および方法(例えば、水槽、インキュベーター、クーラー、およびフリーザー)を使用して、試料を加熱または冷却して、本発明の前述の具体例において特定された温度を得るまたは維持してもよい。試料と異なる温度を有する環境下に試料を置くことは、そのうち試料の温度を変化させるであろうことは理解される。試料内で温度変動があり得るかもしれない。前述のように、試料の温度を、緩やかに変化させて、精子の健康を維持するのを助けるのが望ましい。また、緩やかな温度変化は、試料内の温度変動を減らす役割を担う。当業者によってよく知られるように、試料の温度変化の速度は、試料の容量、試料容器のサイズおよび形状、および試料および環境の間の温度差の規模を含めた多くの要因によって影響されるであろう。しかしながら、当業者は、適切な方法および装置を選択して、全ての関連した要因を考慮した後、所望の温度制御を達成することが直ぐに可能になるだろう。
当業者は、本発明の範囲から逸脱せずに、例示的な温度制御における実質的な変動に対する余地があることを認識するだろう。一般的には、一旦精子細胞が冷却されると、それらを加温することを避けるのが望ましい。さらに、試料収集、染色、仕分け、液滴収集、濃縮、および冷凍保存と関連して上記で論議した温度変動は、本発明の範囲から逸脱せずに、全体的な温度制御に組み込むことができる。また、さらに、精子細胞がいずれかの温度のままである時間は、精子の健康に衝撃を与え得る。従って、温度がプロセスを通して制御される具体例に従って処理することは、下記で論議のように、時刻表内で完了するのが望ましい。
操作のための時刻表
一般的には、精子への損傷を減らすのに最低限の時間で、精子仕分けプロセスを完了するのが望ましい。上記で論議のように、本発明は、上昇した温度で染色して、精子細胞を染色するのに必要な時間を減らすことを含んでもよい。例えば、記載された改善された染色方法の特定の具体例は、約10分まで、染色に必要な時間を減らす。同様に、上記の新規なサイトメーターを使用して、慣用的なサイトメーターによって必要であるより少ない時間で、精子細胞を仕分けてもよい。例えば、上記の技術を用いるフローサイトメーターは、所望のDNA特徴を有する2,000および10,000の間の精子細胞／秒を収集することができる。さらに、冷凍保存プロセスを使用して、慣用的な冷凍保存方法と比較して、処理された精子細胞の冷凍保存を完了するのに必要な時間を減らしてもよい。従って、本発明の１つの具体例は、全体的な方法に従って、精子を処理して、１以上の時間節約の革新を利用して、全プロセスを完了するのに必要な時間を減らすことを含む。例えば、本発明の１つの具体例に従って、精子細胞のバッチ(例えば、射精された精液)を、雄の哺乳類(例えば、雄牛)から収集し、質制御のために評価し、染色し、特異的なDNA特徴に従って仕分け、１以上の容器(例えば、ストロー)にロードし、収集時から約12間の時間内に冷凍保存する。もう１つの具体例において、時間は約8時間未満である。もう１つの具体例において、時間は約6時間未満である。さらにもう１つの具体例において、時間は約3時間未満である。さらにもう１つの具体例において、時間は約2時間未満である。もう１つの具体例において、時間は約1時間未満である。
マルチチャネル仕分け装置および方法
より少ない時間でより多くの精子を仕分けるために、１以上のサイトメトリーユニットを平行して使用して、該同一の精子試料を仕分けることが可能である。これを行う１つの方法は、染色された精子細胞を複数のアリコートに分割し、各アリコートを異なるサイトメーターに流すことである。しかしながら、下記で論議したように、特定の利益を、単一の統合マルチチャネルサイトメトリーユニット内の複数のサイトメトリーユニットを含む装置を設計することによって入手することができる。
統合プラットホームを共有するマルチチャネルシステム
図106-116は、一般に1001で示されるマルチチャネルサイトメトリーシステムを含む本発明の１つの具体例を示し、ここに1003で示される多数のシングルチャネルフローサイトメトリーユニットを統合されたシステムとして一緒にまとめて仕分けられた生成物を得る。４つのそのようなユニットを、この特定の具体例において示すが、この数は変動し得る。ユニットは、次の要素(1)粒子1005の共通供給;(2)電磁放射線1007の共通源;(3)共通ハウジング1009;(4)ユニット1011の操作を制御するための共通インプット;(5)もう一方のユニットに対する１つのユニットの操作の評価を可能にする共通アウトプット1019;(6)共通流体送達システム;(7)共通温度制御システム1023;(7)共通の電力源1025;(8) 共通の廃棄物回収システム 1027;(9)共通の偏向板システム1029; および(9)共通の清掃システム 1031の１以上を含む統合プラットホームを共有することによってのように、様々な方法で統合することができる。１つの具体例において、システムは、これらの要素の全てを含むが、この発明のマルチチャネルシステムは、要素のいずれの組合せも含み得ることが理解されるだろう。システムがより効率的かつ利益的に動くのを可能にし、変数の数を減らすことによってチャネル間のより一定の結果を達成し、必要かもしれないいずれの故障修理を促進し、経済的であるため、共通要素の使用は利益的である。また、マルチチャネルアプローチは、スケールアップまたはスケールダウンに対してより影響を受けやすい仕分けシステムを作る。
サイトメトリーユニット1003の各々は、先の具体例のフローサイトメトリー装置9の特定の部品と同様の部品を有し、便宜のため、対応する部分を、プライム(')の付加された同じ参照数字によって示す。一般的には、各ユニットは、ノズルシステム101'、ノズルシステム 331'を取り付けるための取付具、変換器105'、および、ノズルオリフィス103'を出て行く流体の流れ21'に対して光のビームをフォーカスするための落射照明光学器具417'を含み、これらは全て前述である。各ユニットは、さらに、第１の具体例にあるように操作可能な光検出器117'を含んで、流れ21'中の粒子から蛍光発光31'を検出し、特異的なDNA特徴によって粒子を分類するように処理された電子シグナル701'に、発光31'を変換することを含む。また、各ユニット1003は、液滴35'中に含有された粒子の分類に従って、異なる群または集団123'、125'に、液滴33'を仕分けるために取り付けられる。ユニットによって仕分けられた液滴の集団は、収集システム2201によって収集される。
A.共通ハウジングおよびモジュール性
フローサイトメトリーユニットは、共通ハウジング1009において、モジュール配置で取り付ける。図106および109-113で示される具体例において、ハウジングは、ベース1069およびベースから延びる２つの側壁1071を有する。側壁は、ハウジング1077の前部にて、下部カバーパネル1075を支えるためのショルダー1073の底部対およびショルダー1081の上部対を有する。ハウジング1077の前部の下部カバーパネル1075を、底部ショルダー1073の間に取り付ける。上部ショルダー1081は、ハウジング1085の後方にて、上部カバーパネル1083を支える。ハウジング1077、1085の前部および後方は、実質的に、開いており、内側の装置へのアクセスを提供する。ハウジング1009が、本発明の範囲から逸脱せずに、他の配置を有し得ることは理解されるだろう。さらに、様々なユニットを別々のハウジング内にインストールすることができることは理解されるだろう。
フローサイトメトリーユニット1003は、ハウジング1009内の適切なフレームワーク1087上のモジュールとして、並んで取り付けらえる。具体的には、ノズル101'を位置決定するためのノズル取付具331'は、ハウジングの側壁1071に取り付けられた十字バー1089(図106)に開放可能に取り付けられ、落射照明器具417'のベース429'は、ハウジング1085(図109)の後方に向けてハウジングの側壁1071の間に延びる角度をつけた設置プレート1093に開放可能に締結され、該配置は特定のユニットがモジュールとしてインストールでき、または除去できるようなものである。このモジュール性は維持および／または取換のためのインストール、除去を容易とし、いずれかの数のフローサイトメトリーユニット 1003が、必要に応じてまたは所望であれば、容易に付加されて、システムのスループットキャパシティーを増加させるのを可能とする。
B. 共通流体供給および送達システム
この具体例の流体送達システム1021を備えて、サイトメトリーユニット1003の各々に適切な流体を供する。図108に図式的に示したように、システムは、一般的には、圧力下で、キャリアー流体1107の共通供給からのキャリアー流体17'を運ぶためのポンプ1105、圧力下で、シース流体19'の共有供給1117からの流体を運ぶためのガス圧システム1115ｍそれぞれの供給からの流体を受け取り、圧力下で、必要に応じて、様々なサイトメトリーユニット1003に流体を送達するための様々なシステム1121を含む。図116の特定の具体例において、キャリアー流体の供給は、そのような流体の適当な容量(例えば、 5ml)を含有する容器1123を含む。容器は、ホルダー1125によって維持され、これは容器1123を受け取る大きさにされた空洞1135を有するブロック1133であってもよい。また、ブロックは、後記するように、使用の間、システムを調整するための適当な緩衝材料を含有する容器1139を維持するための第２の空洞1137を有する。
容器からのキャリアー流体を送達するためのポンプ1105は、望ましくは(必要ではない)、前述のように、シリンジポンプ1141である。ポンプのプランジャは、摂取ストロークを通って移動して、容器1139から選択された容量のキャリアー流体17'を吸引し、排出ストロークを通って、キャリアー流体を、供給ライン1147を通ってマニフォールド1177へ、およびそこから、システムの種々のノズル101'まで分注する。また、シリンジポンプは、緩衝剤を含有する容器1139から流体を吸引し、記載される様式で、システムを介して、緩衝剤を押し出すように操作可能である。三方弁1149は、担体および緩衝流体の流れを、ポンプ1141へのおよびそれからの流れを制御する。ポンプは、プロセッサー131'の制御下で、可変のスピードモーターによって動かされる。一例として、ポンプは、選択的に可変のスピードにて操作して、ユニット1003から所望のスループットを得るのに必要な速度にて、多種多様なシステム1121に、キャリアー流体を押し出すステッパーモーターによって動かしてもよい。流体送達デバイスの複数のシリンジポンプまたは他のタイプは、単一のシリンジポンプの代わりに使用することができる。
１つの具体例において、シース流体の供給1117は、容器1155、例えば、供給ライン1157の手段によってマニフォールド1177に接続されたタンクを含む。ガス圧システム1115は、タンクを加圧するように操作可能であり、タンクに供給される圧力を制御するためのその中にレギュレーターを有するガスライン1163、および第１の位置において、タンクおよびガス源の間の連絡を確立し、第２の位置において、タンクに送気するよう操作される二方弁 1167を介してタンクに連絡する圧縮ガス1161(例えば、空気または窒素)の源を含む。ガス圧調節装置 1165は、空気源から供給された圧力を制御するように調整可能な慣用的な調節装置である。ガス圧システム 1115は、また、以後記載する様式で、流体回路を洗い流すのに使用可能な洗浄液の供給1173(例えば、タンク内の脱イオン水)を加圧するガスライン1169を含む。ガスラインを通る流れは、弁1167と同じ様式で操作可能な二方弁1167によって制御される。
１つの具体例において、マニフォールド1177は、図116に図式的に示されるような流体流回路1185を規定するように、形成された通路1181を有する材料のラミネート加工されたブロック1179(図112)を含む。(通路は、ブロックを形成するためのラミネート加工のアセンブリの前に、ラミネートの面に溝を機械加工することによって形成することができる。)流体回路は、シリンジポンプ1141およびシース流体の供給1117に接続されたインレット1189、1191、およびそのような流体をフローサイトメトリーユニット1003に供するための各々がキャリアー流体アウトレットおよびシース流体アウトレットを含むアウトレット1193の組を含む。様々な流路1181を通る流れは、弁V1-V6によって制御され、これらは、１つの具体例において、マニフォールドブロック1179に付着したソレノイド弁である。ブロックは、望ましくは、実質的に透明な材料(例えば、アクリル樹脂)製で、システム1121のモニタリングおよび故障修理を促進する。示される具体例において、マニフォールド1177は、ノズルシステム101'の下のハウジングの底部に隣接するハウジング1009の側壁1071の間を延びるフレーム部品1203に付着する。マニフォールド1177のインレットおよびアウトレット1193は、Scivexの子会社であるUpchurch Scientificから入手可能なフランジのないナットおよびフェルールフィッティングのようなブロックに縫合されたフィッティング1205を含んでもよい。一般的に流体回路1185の設計および構築、特にマニフォールド1177は、本発明の範囲から逸脱せずに変動し得ることが理解されるであろう。
図116を参照すると、キャリアー流体17'に対するマニフォールド流体回路1185は、キャリアー流体の制限された供給(例えば、1.0ml)を維持するための試料容器1207を含む。もし、例えば、キャリアー流体が精子細胞を含有するなら、短時間の間でさえ、小さな空間でのそのような細胞の保存は運動性に対して有害であるため、そのような容器をノズル101'の近くに提供することは、精子細胞の生存性および運動性に対して利益的であろう。試料容器1207からノズル101'へのキャリアー流体の流れは、一連の二方弁V1A-V1D、各ノズルに対して１つによって制御される。各弁V1A-V1Dは、シリンジポンプ1141によって生じた圧力下の針へのキャリアー流体 17'の送達のための試料容器の針1217およびそれぞれのノズルの針157'の間の流体連絡を確立する第１の位置、および全フローサイトメトリーユニット1003に一般的な、1221と示された針1217および廃棄システムの間の流体連絡を確立する第２の位置を有する。示された具体例において、廃棄システム1221は、廃棄物質を保持するための廃棄タンク1223、廃棄タンク中に真空を発生させるための真空ポンプのようなメカニズム1225、および弁V1A-V1Dおよび廃棄タンクを接続する廃棄ライン1227を含む。弁V3は、必要に応じて、廃棄ラインを開いたり閉じたりするための廃棄タンクから上流の廃棄ラインにおいて提供される。適当な疎水性フィルター1233は、廃棄タンク1223および真空ポンプ1225を接続するラインにおいて提供される。
シース流体19'に対するマニフォールド流体回路1185は、複数の弁V2A-V2Dを含む。各弁は、シース供給ライン1241を介するシース流体19'のそれぞれのフローボディー133'への送達のためのタンク内のシース流体の供給1117と流体連絡を確立する第１の位置、および廃棄ライン1247を介するフローボディーおよび廃棄タンクの間の流体連絡を確立する第２の位置を有する。シース流体がフロー体133'に送達される圧力は、（調節装置1165によって制御されるように）シースタンク圧によって変動し、これは、1ないし100 psi、より望ましくは10ないし50 psi、さらにより望ましくは15ないし40 psi、さらにより望ましくは約20ないし30 psiを変動し得る。
ユニットのユニットに対する共通供給の使用は様々な利点を有するが、少なくともいくつかのフローサイトメトリーユニットが、別々の源からの試料材料で供給することができることが考えられる。
C.共通電力源およびインプットおよびアウトプット制御
また、フローサイトメトリーユニット1003は、共通電力供給1025、共通電力送達システム、マイクロプロセッサー131'によってチャネルの操作を制御するための共通インプット(GUI)715'、およびもう１つのチャネルに対する１つのチャネルの操作の評価を可能にするマイクロプロセッサーに提供される共通アウトプットを共有する。例えば、共通アウトプットは、各チャネルによって測定された蛍光強度の指標、各チャネルが粒子を分離する速度の指標、（XおよびY細胞からの蛍光パルスの強度差によって示され得る）染色変動の指標および粒子間を識別するために各チャネルによって使用される決定境界763の指標のために、各落射照明システムからマイクロプロセッサーに、デジタル化されたシグナルを供することを含む。もう１つの例として、共通アウトプットは、破壊センサー389'からマイクロプロセッサーに、各チャネルの液滴破壊位置107'を示すために、アウトプットシグナルを供することを含む。
D.共通温度制御
所望により、1257と示される温度制御システムは、保持ブロック1133中の容器1123の内容物の温度およびマニフォールド1177の温度を制御するために提供される。そのような温度制御は、システムの変動を減らし、従って、チャネル間のより一定の測定を供し、特定のタイプの細胞(例えば、精子細胞)に関しては、細胞の生存性を維持するのを助ける。
１つの具体例において、温度制御システム1257は、保持ブロック1133中に流体路1263およびマニフォールドブロック1179中に流体路1269を含む流体流回路1259、選択された温度にて回路を通る温流体(例えば、水)を循環させるための制御ユニット1265を含む。温度は、望ましくは、流体、特にキャリアー流体を最適な温度で維持して、細胞生存性、もし精子細胞が含まれるなら精子運動性を最大化するようなものである。遮断弁V6は、回路を通る流れを制御するために、回路に位置させる。温度制御ユニットを使用して、上記で論議したように、仕分け前に所望の温度にて精子細胞を維持してもよい。
流体送達システム1021の全ての弁は、オペレーターの制御または適当なプログラム下で、ソレノイドのような慣用的な手段によって操作する。マニフォールドブロック1179の外側にシステムの部材を接続する様々な流体流ラインは、望ましくは、いずれの閉塞も観察するために、実質的に透明なプラスチック管でできている。例えば、管は、FEPポリマーの0.0625 in. OD管であってもよい。温度制御システム1257のフローラインは、望ましくは、いくらか大きく(例えば、 0.125 in. OD)、より大きいフロー能力を提供する。
E.共通光ビームおよびビーム分散システム
前述のように、マルチチャネルシステムは、電磁放射線またはビーム光1007の共通源を共有する。（制限ではなく）例としては、源は、主に351.1 nmおよび363.8 nmの波長を有するUVマルチラインレーザーからのレーザービームであってもよい。別法として、各サイトメトリーユニットに送達される有効な電力を増加し、それにより単一レーザーで操作できるサイトメトリーユニットの数を増加させるために、パルスレーザー(例えば、モードロックされたレーザー)を用いる、特に(パルスレーザーセクションで論議されるように) パルスレーザーとデジタルサンプリングを同期化することが望ましいかもしれない。
レーザービームを生じるのに必要な電力は、各フローサイトメトリーユニットの必要およびユニットの数によって変動するだろう。例えば、もしN ユニットが存在し、各ユニットが、Wワットの有効な電力を有する光ビームを必要とするならば、(W x N) + L［式中、Lはシステムの光学部材間のシステム電力喪失に等しい］の電力を有するレーザービームを生じるのが必要になるだろう。単一のレーザーを使用して、全てのフローサイトメトリーユニットを供給することは、複数のレーザーを用いるシステムと比較すると、経済的である。また、経済的であり、異なるビーム特徴(例えば、ビーム強度、光偏光性、ビーム発散)または複数のレーザーの使用から生じる電気的ノイズによる変動がないため、１つのチャネルから次ぎへのより一定した測定を提供する。
本発明の１つの具体例によると、ビーム分割およびガイダンスシステムを使用して、単一のレーザービームを、３以上の別々のビームに分ける。図117に示されるように、例えば、50/50 ビームスプリッター1270(つまり、単一のビームを、大体同等の強度を有する２つの別々のビームに分けるように操作可能なビームスプリッター)を使用して、単一のビーム25'を２つのビーム1270A、1270Bに分けることができる。第２の50/50 ビームスプリッター1271を使用して、２つのビームのうちの１つ1270Bをさらなるビーム1271A、1271Bに分けることによって、単一のビーム25'から全部で３つのビーム1270A、1271A、1271Bを発生することができる。各ビームは、フローサイトメーターの光学システム、例えば図117に示されるように落射照明光学システム415'に向けることができる。また、さらなる50/50ビームスプリッターを使用して、単一のレーザービームをいずれの数のさらなる別々のビームにも分けることができる。図118に模式的に示されるように、例えば、３つの50/50 ビームスプリッター1270、1271、1272を使用して、単一の25' ビームを４つの別々のビーム1271A、1271B、1272A、1272Bに分けることができるように、第３のビームスプリッター1272を、3-方ビーム分割システム(図117)に加えることができる。これから、単一のビームをいずれの数の別々のビームにも分けることができることを直ぐに理解することができる。他のビーム分割配置を使用して、入射源ビームを様々なユニットに対して複数の光ビームに分けてもよい。
ビーム分割システムの１つの望ましい具体例を図106および109に示す。ビームガイダンスシステム1273は、共通ビーム1007を様々なフローサイトメトリーユニット 1003の光学器具417'にガイドするために提供される。図106および111に示される具体例において、ガイダンスシステム1273は、ハウジング1009の１つの側壁1071上に取り付けられた下部鏡アセンブリ1279、下部鏡アセンブリ上の側壁1071上に取り付けられた上部鏡アセンブリ1281、および各光学器具417'と関連した一連の反射フィルター1283を含む。下部鏡アセンブリは、適当な源から、上部鏡アセンブリに上向きにビーム1007を反射するように操作可能であり、上部鏡アセンブリは、側壁1071中の開口を通るビームを、様々な器具417'の反射フィルター431'に反射するように操作可能である。
１つの具体例において、下部鏡アセンブリは、ハウジング1009の側壁1071に固定されたベース1285、マイクロメーター、ステージ上の傾斜を変えることができるプラットホーム1293(例えば、Newportから入手可能な運動光学取付具Model P100-P)、およびプラットホーム上の鏡1295のような適当なメカニズム1291によってベース上を垂直に動くことができるステージ1289を含み、鏡の位置は、ステージおよび鏡プラットホームを動かすことによって、適当な位置に調整可能である。上部鏡アセンブリは、下部アセンブリと同様で、ベース1297、垂直に動くことができるステージ1299、ステージ1301上の傾斜を変えることができるプラットホーム、およびプラットホーム上の鏡1303を含む。一対の標的プレート1309を、上部および下部鏡アセンブリの間のハウジング1009の側壁に加える。標的プレート1309は、そこに垂直に並んだ穴1311を有して、上部および下部の鏡の調整を促進して、入射ビーム 1007が、そのフィルターの全てが入射ビームと並んでいる器具417'の反射フィルター431'に向かって正確に反射されるようにする。
最初の３つの反射フィルター1315、1317、1319の各々は、ビームスプリッターとして機能し、つまり、ビームの特定のパーセンテージを反射し、ビームの残りのパーセンテージを通すように機能する。例えば、４つの落射照明器具の場合、最初の３つの器具の反射フィルター431'の各々は、レーザー光1007のパーセンテージを反射し、一連の最初の３つのユニットの各々が、元のビーム 1007の電磁放射線の25%を受け取るようにする。例えば、第１、第２および第３のユニットの反射フィルターは、それぞれ、同時光の25%、33%および50%を反射してもよい。一連の最後の反射フィルター1321は、望ましくは、残りの光(元ビームの約25%)の全てを、一連の最後の器具に反射する。結果として、４つの器具の各々は、放射線（光）の同一の強度を受け取って、それぞれの流れにおいて細胞を問い合わせるはずである。
上記システム1273で使用されるビーム分割デバイスによって、レーザービームが特定の偏光を有することが望ましいかもしれない。誘電フィルターの透過率-対-反射率の比率は、光の偏光によって変動し得る。さらに、直線偏光した光を扱う場合、（入射の特定の角度での使用のために製造される）誘電フィルターは、入射の角度の変動に対して敏感すぎ得る。光の偏光は、光がフィルターと相互作用する時、誘電フィルターの光学軸に関して様々な異なる配向にあるため、円偏光または楕円偏光に偏光した光は、この問題をある程度軽減する。従って、楕円偏光または円偏光した光は、ランダムに偏光した光をシミュレートし、これは、誘電フィルターに対する入射の角度の変動に対してより耐性を提供する。従って、もし上記のレーザーが垂直偏光を有する光のビームを生じれば、例えば、分割する前に、光を円偏光した光に変換するのが有利かもしれない。当業者によって理解されるように、これは、レーザー偏光の面に対して45度回転されたその光学軸を有する偏光物質の1/4波遅延プレート(フィルター)を介して、ビームを通すことによって達成することができる。従って、波プレートによって透過されたビームは、ほぼ円偏光を有し、より簡単に分割することができ、それぞれのフローサイトメーターユニットの光学システムに、複数のビームを提供することができる。
さらに、波遅延プレートを回転して、レーザー偏光および波プレートを作るのに使用される物質の光学軸の間の角度を改変することによって、離心率を、ビームのほぼ円形の偏光に導入することができる(つまり、偏光をより楕円偏光にすることができる)。ビームの楕円偏光の離心率を変えることで、光のより大きいパーセンテージに対する偏光ベクトルを誘電フィルターの光学軸に関して特定の角度を有するようにすることによって、誘電フィルターの透過率-対-反射率の比率を変えることができる。従って、もし複数のサイトメトリー ユニット間の光のバランスが所望の範囲外であれば、波プレートを回転させて、楕円形に偏光した光の離心率を増加または減少させ、それにより、より良いバランスが達成されるまで種々のフィルターの透過率-対-反射率の比率を改変することができる。同様に、もし波プレートが楕円形に偏光した光を透過しているなら、フィルターを回転することによって、該フィルターのうちの１つの透過率-対-反射率の比率に影響を及ぼすことができる。
単一ビームを複数の単一ビームに分けるのに使用される方法に拘わらず。各サイトメトリーユニットに送達された電力のバランスは、光のパーセンテージを選択的に遮断して、全てのサイトメトリーユニットを同じレベルの電力まで下げることによって達成することができる。例えば、各落射照明システム415'の減光フィルター 447'を選択して、光を多少遮断して、ビーム分割およびガイダンスシステムによって、各個々のサイトメトリーユニットに送達される照明電力の均衡をとることができる。もしマルチチャネルユニットの１つのチャネルが、有意に、ビーム分割およびガイダンスシステムから有意により多くの照明を受け取るなら、より少ない光を伝達する減光フィルター 467'を該チャネルの落射照明システム415'で使用して、該チャネルに対する照明電力をもっと他のチャネルと一致するようにすることができる。必須ではないが、照明電力のチャネル間の変動は、約10%未満であることが望ましい。チャネル間の変動が約5%未満であることがさらにより望ましい。
また、上記のように、パルスレーザースキャニングは、マルチチャネルフローサイトメトリーに望ましいかもしれないことが理解されるであろう。例えば、UVマルチラインレーザーを、約85MHzで操作するモードロックされたパルスレーザーと置き換えて、より多くのフローサイトメトリーチャネルを単一のレーザーによって電力を供給することができる。例えば、約85MHzの周波数にて、約12ピコ秒の幅（持続）を有するモードロックされたレーザー発光パルスの各パルスにおいて提供されるピーク電力は、レーザーの平均電力アウトプットの約800倍である。従って、モードロックされたレーザー(例えば、Spectra-PhysicsからのVanguard 350)は、ほんの約350ミリワットで操作するが、２、３ダースのサイトメトリーユニット(例えば、32サイトメトリーユニット)を操作するのに十分な照明エネルギーを供することができる。
また、ユニットに光を供給するための光ファイバーの使用も考えられる。この具体例において、ファイバーを使用して、それぞれのユニットにレーザーからの光を向け、従って、上記のガイダンスシステムの必要性を排除する。
F.共通偏光板
図106および108-116で示された具体例において、各フローサイトメトリーユニット1003の仕分けシステム119'は、ユニットが望ましくはハウジングの前部にて、ハウジング1009の幅を横切って延びる２つの共通偏光板1331を共有する以外は、最初の具体例において記載された仕分けシステム119と実質的に同一である。偏光板の共通組を使用することには、１つのチャネルから次への一定の変化、共通電力供給の使用、より安定した磁場およびより均一の液滴偏光を供するより大きなプレート面積、および仕分けられた試料の収集のための偏光の一定の角度を含めた利点が存在する。偏光板1331は、ハウジング1009に固定されたフレーム 1333上に取り付けられる。別法として、別々のプレートは、各ユニットに提供され得る。
G.共通収集システム
図107および116に示される具体例において、共通収集システム 2801は、単一のユニットに対する収集システム 2201と関連した、上記の各サイトメトリーユニットに対する２つのインターセプティングデバイスを含む。しかしながら、共通フレーム 2803は、全８つのインターセプティングデバイスを保持するために供される。また、各サイトメトリーユニットに対する２つのインターセプティングデバイスのうちの１つは、流体を、収集容器よりむしろ共通廃棄トラフ2805に向ける。廃棄トラフは、ほとんど価値のない粒子(例えば、乳牛を育種するためのY-染色体担持精子細胞)を含有する仕分けられた液滴を廃棄するのをより容易にする。もし全ての仕分けられた液滴を維持するのが望ましいならば、廃棄トラフを除去して、収集容器を各インターセプティングデバイスの下に置いてもよい。図107および116に示される具体例における４つの収集容器は、収集トレイ2807の表面の開口にある。共通水漕(図示せず)は、収集トレイの表面下に供されて、収集容器の内容物の温度を制御してもよい。
H.マルチチャネル制御
種々のフローサイトメトリーユニットは、望ましくは上記のような共通インプットおよび共通アウトプットを有するマイクロプロセッサー131'、(または他の適当な処理システム)によって制御される。
望ましくは、各フローサイトメトリーユニット1003の操作パラメーターは、そのようなパラメーターがユニット間で変動し得るように、他のユニットとは独立して設定することができる。これらのパラメーターは、例えば、液滴形成の頻度、特定のユニットによって利用される制御および仕分け戦略、ユニット、および他のパラメーターに供給される流体中の粒子を分類および仕分けるために各ユニットによって使用される基準を含んでもよい。例えば、特定の状況において、１以上のユニットに、第１の流速にてキャリアー流体 17'を供給し、他のユニットに第２の（異なる）流速にて供給するのが望ましいかもしれない。同様に、１以上のユニットに対して１つの制御仕分け方法(例えば、「高効率」戦略)を使用し、その間、他のユニットに対しては異なる戦略(例えば、「低喪失」戦略)を使用するのが望ましいかもしれない。ユニット間のこれらのパラメーターの制御された変動によって、履歴的データおよびリアルタイムベースで収集されたデータに基づき、ユニットのスループットを管理し、システムの結果を最適化することができる。また、独立した操作の能力は、選択されたユニットが、全てのユニットが必要または入手可能であるより少ない事象において操作されることを可能にする。
I.マルチチャネルシステムの操作
この具体例のマルチチャネルシステムの操作は、複数のフローサイトメトリーユニットが、より高いスループットのために、並列してフローサイトメトリー操作を実行するように適合されるという点以外は(つまり、同じ時間または重複する時間の間)、先に記載されたものと同様である。
ランの開始前に、必要に応じて、流体送達システム1021は、弁V5をその洗浄位置に動かすことによって、タンク1173からの洗浄溶液で洗い流される。次いで、システムは、シリンジポンプ1141を用いて緩衝流体によって調節される。この手順の間、弁V1A-V1DおよびV2A-V2Dを動かして、真空下の廃棄容器1223との連絡を確立する。結果として、洗浄溶液および／または緩衝流体は、システムを通って廃棄へと流れる。このプロセスは、システム1021を洗浄し、シリンジポンプ 1141を準備し、システムから気泡を除去する。
適当に位置された三方弁 1149によって、シリンジポンプ1141は、摂取ストロークを通して操作されて、粒子、例えば、精子細胞を含有するある量のキャリアー流体 17'を吸引し、引き続いて、弁1149を動かして、マニフォールド1177との連絡を確立し、シリンジポンプは、放出ストロークを通って、ある量のキャリアー流体を試料容器 1207へと押し出して、それを充填する。キャリアー流体 17'の温度は、温度制御システム1257によって制御して、所望の温度にて、キャリアー流体中の細胞を維持する。試料容器 1207との連絡を確立するために置かれた弁 V1A-V1Dによって、シリンジポンプ1141のさらなる操作は、前述のように、ラインを通して、ノズル101'を通る流れに対するそれぞれのノズルアセンブリの針へとキャリアー流体を押す。同時に、シース流体タンク1155との連絡を確立するように置かれた弁V2A-V2Dによって、前述のように、それぞれのフロー対への供給ラインを通って、およびノズルを通って、シース流体19'は押される。このプロセスは、システム 1001を通って適当な量の流体を押し出すのに十分な適当な時間、続く。特定のランの持続期間は、供給容器中のキャリアー流体の量、キャリアー流体がシステムを通って押される速度、およびシステムのチャネルの数によって変動するだろう。例えば、ランは、制限された時間(例えば、キャリアー流体の約１ml.が各ノズルに送達される間の15分)だけ続いてもよく、または必要に応じて補給される流体の供給によって、無制限に続いてもよい。
針157'が詰まる場合、適切な弁 V1を動かして、廃棄容器1223との連絡を確立する。次いで、フローボディー133'に進入するシース流体19'は、真空1225の力下で、針157'を通って廃棄へと流れ戻り、従って、針を洗い流し、洗浄する。もし流れを特定のノズルへと閉じる必要があれば、弁 V1およびV2は、単にそれらの廃棄位置へと交換される。
シングルチャネルおよびマルチチャネルに関して本明細書中に記載のシステムは、XおよびY細胞の分離のような、粒子分離に関して記載されてきたが、そのような粒子が、特徴Aおよび特徴Bとして適宜に留意され得る異なる特徴を有するいずれかの粒子を含み得ることが考えられる。さらに、いくつかの具体例において、フローサイトメトリー装置(シングルチャネルまたはマルチチャネル)が粒子を仕分けるためではなく、それらを分類するためだけに操作するように、仕分け機能は、全て、排除されてもよいことが理解されるであろう。
マルチチャネルシステムを、フローサイトメトリーユニットを平行して操作する文脈で上記したが、ユニットは連続して操作することが可能であることも理解されるであろう。例えば、１つの流れ中の粒子は、１つのユニットによって、複数の集団へと仕分けることができ、次いで１以上のそのような仕分けられた集団が、連続した１以上の他のユニットを通過して、さらなる仕分け操作を実施して、同じまたは異なる仕分け戦略を用いて異なる粒子を仕分けることができることが考えられる。
J. 縦型マルチチャネル具体例
図119および120は、もう１つの例示的マルチチャネルフローサイトメトリーシステムを示す。一般的に4001と示されるこのシステムは、一緒にまとめられた４つのサイトメトリーユニット4009を含む。ノズルシステム101'、落射照明光学システム450'、偏光板629'、試料ステーション4051、汚染防止メカニズム4031および各ユニット4009の他の部材は、共有の垂直の取り付けボード4011上に取り付けられる。図120を参照すると、単一レーザー4013および上記のビーム分割およびガイダンスシステム1273と実質的に同様のビーム分割およびガイダンスシステム4015は、各落射照明システム450'の照明を供する。レーザー4013は、ビーム分割およびガイダンスシステム4115を含有する共通ハウジング4021の穴4019(図119)を通過する。ビーム分割およびガイダンスシステム4115および落射照明システム450'は、ボード4011の一側面上にある。各落射照明システム450'のフォーカスレンズアセンブリ491'は、ボード4011を通って、ユニット4009の部材の残りが取り付けられる他の側面（図26および27に示されるシングルチャネルシステムの配置の様子と同様）へと延びる。
ユニット4009は、全て、ノズルシステム101'が流体の流れ21'を下向きに向けるように向けられる。また、各ユニット4009は、粒子の所望の集団を含有する液滴33を収集するための収集容器4033および他の液滴33を収集するための廃棄容器4035を含む収集システム4031を有する。水槽(図示せず)または他の温度制御を使用して、収集容器 4033の温度を制御してもよい。
また、複数のフローサイトメトリーユニット4009は、共通電力供給(図示せず)、ユニットの操作を制御するための共通インプット(図示せず)、およびもう一方に対するユニット4009の操作の比較的評価を可能にする共通アウトプット(図示せず)を共有することができる。
２つの例示的マルチチャネル具体例1001、4001の比較によって示されるように、統合プラットホームの性質およびマルチチャネルシステムにおける複数のフローサイトメトリーユニットの間またはその中の特徴の共有は、本発明の範囲から逸脱せずに、広範囲に変動し得る。
全体的なプロセスに対するマルチチャネル処理のインパクト
上記の全体的なプロセスは、マルチチャネル精子仕分けと実施して、精子細胞を仕分けるのに必要な時間を減らすことができる。ほとんど例外なく、方法は変わらない。１つの小さな変更は、仕分けられた精子細胞が複数の収集容器中に収集されるであろうことである。複数の収集容器の内容物は、所望により、濃縮のために組み合わされてもよい。別法として、各収集容器の内容物は、別々に濃縮されてもよい。収集から冷凍保存工程の完了までの精子細胞(例えば、精液)のバッチを仕分けるのに必要な時間は、複数のサイトメトリーユニットを用いてバッチを処理することによって、有意に減少することができることが理解されるであろう。例えば、もし４つのサイトメトリーユニットが平行して操作して、精子細胞のバッチを処理するなら、仕分けを完了するのに必要な時間は、単一のサイトメトリーユニットを用いてバッチを仕分けるのに必要な時間の約１／４まで減少する。従って、平行して操作する４つのサイトメトリーユニットで精子を仕分ける工程を、単一のサイトメトリーユニットで精子を仕分ける工程と置き換えることによって、収集から冷凍工程までの方法の完了の例示的な時刻表は減少させることができる。時間は、平行に操作するサイトメーターの数を増加して、４つ以上のそのようなユニットを有する平行システムを操作することに関する実際の制限に付される試料中の精子細胞を仕分けることによって、よりさらに減少させることができる。従って、本発明の１つの具体例によると、上記の全体的なプロセスにおける仕分け工程は、マルチチャネルフローサイトメトリー装置における特異的なDNA特徴に従って、精子細胞を仕分けることによって実施される。さらにもう１つの具体例において、精子処理方法は、各チャネルが所望のDNA特徴を有する約2,000-10,000 精子細胞／秒の範囲で収集するマルチチャネルフローサイトメトリー装置における特異的なDNA特徴に従って、精子細胞を仕分ける工程を含む。
マルチチャネル仕分け実施例I
人工膣および37℃で温度制御された容器中の近くの染色設備に移送された試料を用いて、雄牛精液を、性的に成熟した雄牛から収集した。受け取った際、精液を、標準的かつよく知られた手順に従い、Hamilton-Thorn 運動性アナライザー(IVOS)によって、濃度、視覚的運動性、運動性、進行的運動性について分析した(Farrell et al. Theriogenology, 49(4): 871-9(Mar 1998))。
６つの管の1mlの150 X 106 精子/mL 精子懸濁液を、10mM ピルビン酸を含有する41℃ TCA #2緩衝液中に精液のアリコートを懸濁することによって調製して、全体的なpHを7.35まで持ってきた。次いで、水中の10 mM Hoechst 33342溶液の可変量を、精子試料に添加して、200、300、400、500、600、および700μM Hoechst 33342の最終色素濃度を得た。６つの試料の各々を、約30分間、41℃にてインキュベートした。試料を、フローサイトメトリーによって分析し、X細胞集団の%CVを、200、300、および400 μM Hoechst 33342試料に対して、反復コンピューターアルゴリズムによって予測した。300および200 μM Hoechst 33342に対する%CVを、両方とも、1.3 %CV近くの許容される範囲内であるのを確実にした。従って、250 μM Hoechst 33342の濃度を使用して、さらなる処理について、精子細胞のバッチを染色することを決定した。
各々、150 X 106 精子/mL 精子懸濁液の2mLを含有する２つの管を、10mM ピルビン酸を含有する41℃ TCA #2緩衝液中の精液のアリコートを懸濁することによって(再び、全体的なpHを7.35に持ってくる)調製した。次いで、水中の10 mM Hoechst 33342溶液を、２つの精子懸濁液の各々に添加して、250μM Hoechst 33342の最終色素濃度を得た。精子懸濁液を、30分間、41℃水槽中で維持した。30分後、精子懸濁液を41℃水槽から除去し、4μLの25mg/mL FD&C #40を懸濁液のうちの１つに添加した。他を、外界温度で保存して、評価アッセイに、比較試料を供した。
染色されクエンチされた精子懸濁液を、４チャネル液滴仕分けフローサイトメーターのうちの１チャネルの試料ポートにロードした。ダルベッコのPBSをシース流体として使用した。サイトメーターに、上記のように60ミクロンオリフィスを有する配向ノズルを設けた。半円形バッフルプレートを、上記のように、ノズルの縦軸に垂直にインストールした。変換器を54 KHzで操作し、液滴破壊位置を手動で制御した。上記の落射照明光学システムを使用して、連続波レーザーのビームの約25%を向けて、垂直の角度にて、流体の流れと交差した。フォーカスおよび収集レンズは、0.65開口数を有した。ビームを、精子細胞をスリットスキャニングするために、3μm未満の幅を有するスポットにフォーカスした。デジタルシグナル処理を使用して、各検出されたパルス波形に対して、限界勾配差およびパルス面積を抽出した。二次元CSDおよびパルス面積特徴空間におけるX細胞、Y細胞、および不確定の細胞の分類のための分類パラメーターを、染色体内容物に従って精子細胞を分類するために、手動で、処理システムに入れた。
精子を、XおよびY染色体内容物に従って、X細胞の収集に対して同時受入戦略を用いて仕分け、各分類されていない精子がX細胞またはY細胞である50/50確率を付与した。試料流体速度を手動で調整して、85%以上にて、（GUIによって示されるように）収集されたX細胞集団の純度を維持し、X細胞収集の速度を、最小限の速度以上で維持した。約１５００万のX精子を、少なくとも１時間、シース流体中に浸漬した管中に収集し、次いで、pH 7.0にてTCA #2緩衝液中で0.5mLの 10% 卵黄で覆った後、管を取り出し、同様に調製されたさらなる管と置き換えた。
フローサイトメーターから収集管を取り出した直後、染色されているが仕分けられていない精子懸濁液からの比較試料を調製した。仕分けられた試料および比較試料を、15ml管において、750gにて、7分間遠心した。上澄みを、移送ピペットを用いて除去して、約4000万精子/mLの濃度を得た。TCA #2緩衝液pH 7.0を、精子懸濁液に添加して、約2000万精子/mLの最終濃度を得た。このプロセスを、フローサイトメーターが４つの収集管(A2-A5)を生成するまで続けた。仕分けられた試料および「仕分けられていない」比較試料をIVOSによって評価した。仕分けられた試料およびその仕分けられていない比較試料を、微分干渉顕微鏡によって、%無傷の先体についてテストした。全ての仕分けられた試料を血球計によって計数して、仕分けられた試料／時間のアウトプット速度を決定した。% X染色体担持精子を、フローサイトメーター再分析によって確認した。仕分けられた試料および「仕分けられていない」比較試料に対するIVOS評価の結果を、図121(運動性)および122(進行性運動性)に提供する。各収集管へ仕分けられた精子の総数を、図123に示す。各収集期間に対する一時間当たりに仕分けられた精子の割合を図124に示す。各仕分けられた試料に対するX染色体担持精子のパーセンテージを図125にリストする。先体完全性の評価の結果は、仕分けられた試料に対して72%無傷の先体であり、仕分けられていない比較試料に対して78%であった。
結果は、持続した期間、マルチチャネルフローサイトメトリーシステムのチャネル当たり、85%以上の純度にて、1秒当たり5,000以上の仕分けられたX細胞を得る技術的能力を示す。また、結果は、理想的条件下で、持続された期間、85%以上の純度にて、1秒当たり7,000以上のX細胞／秒を得る技術的能力も示す。さらに、結果は、そのような高速フローサイトメトリー仕分けによって得られた仕分けられた精子細胞の試料が、運動性のほんの僅かな低下に悩むだけであり、仕分けられた精子が良い受精能を有するであろうことを示す。
マルチチャネル仕分け実施例II
雄牛精液を、人工膣を用いて性的に成熟した雄牛から収集した。精液を２つのアリコートに分けた。250μLの精液の第１のアリコートを、5mLの37℃ Triladyl（登録商標）中で懸濁した。精液の残りを含む第２のアリコートを、２部37℃炭酸緩衝液(pH 6.1-6.2)中で懸濁した。両方のアリコートを、温度制御された容器内で、37℃にて、処理施設へ移送した。処理施設にて、第１のアリコートを、200mLビーカー内の〜120mLの37℃の水中で漂遊させ、冷室に置いて、5℃までゆっくり冷却した。第２のアリコートを、標準的およびよく知られた手順に従って、Hamilton-Thorn運動性アナライザー(IVOS)によって、濃度、運動性および進行性運動性について分析した(Farrell et al. Theriogenology, 49(4): 871-9(Mar 1998))。
150 X 106 精子/mL 精子懸濁液の３つの1mL管を、第２のアリコートから、空の管へ、15000万精子を含有するサブ-アリコートを移すことによって調製し、5分間500gにて遠心し、上澄みを除去し、10mM ピルビン酸 pH 7.35を含有する1mLの28℃ TCA #2緩衝液中に、精子ペレットを再懸濁した。水中の10mM Hoechst 33342溶液を、種々の量で、３つの管の各々に添加して、100、150、および200 μM Hoechst 33342の最終色素濃度を得た。３つの管の各々を、約60分間28℃に維持した。３つの管の各々からの精子を、フローサイトメトリーによって分析し、X集団の総蛍光強度のCVを、対話式コンピューターアルゴリズムを用いて、100、150、および200 μM Hoechst 33342染色条件について決定した。150および200μM Hoechst 33342に対するCVは、両方とも、1.3%近くの許容される範囲内であった。従って、仕分けのために150μM Hoechst 33342 濃度を含む染色条件を用いることを決定した。
5mLの150 X 106 精子/mL 精子懸濁液を含有する１つの管を、第２のアリコートからの75000万精子を含有するサブ-アリコートを移すことによって調製し、5分間500gにて遠心し、上澄みを除去し、10mM ピルビン酸(pH 7.35)を含有する28℃ TCA #2緩衝液中に精子ペレットを再懸濁した。水中の10mM Hoechst 33342溶液を、150μM Hoechst 33342の最終色素濃度を得る量で、管に添加した。管を、60分間、28℃水槽中で維持した。60分後、管を28℃水槽から取り出し、10μLの25mg/mL FD&C #40を添加した。
仕分けられ、クエンチされた精子懸濁液を、マルチチャネル液滴仕分けフローサイトメーターシステムの１つのチャネルの試料ポートにロードした。精子懸濁液を、28℃にて維持した。マルチチャネル実施例I記載と実質的に同一の器具設定を用いて、XおよびY染色体担持精子を、少なくとも１時間、シース緩衝液と浸漬し、次いで、10 mM ピルビン酸 pH 6.6を含有する0.5mLのTriladyl（登録商標）冷凍保存培地を添加することによって調製された収集管に、約1800万精子の豊富化されたX細胞集団を入れるのに必要な時間、同時発生打切仕分け戦略を用いるフローサイトメトリーシステムによって分離した。精子細胞を、約25,000および30,000細胞/秒の間の速度にて、フローサイトメトリーシステムに導入した。X細胞の豊富化された集団を、4,500／秒ないし6,000／秒を変動する速度にて収集した。約1800万精子を収集管に仕分けた後、管を除去し、同様に調製されたもう１つの管で置き換えた。フローサイトメーターから収集管を除去した直後、仕分けられた精子懸濁液を、700gにて、7分間遠心した。上澄みを、移送ピペットを用いて除去して、約10000万精子/mLの濃度を得た。10 mM ピルビン酸(pH 6.6)を含有するTriladyl（登録商標）冷凍保存培地を、精子懸濁液に添加して、約5000万精子/mLの最終濃度を得た。このプロセスを、フローサイトメーターが３つの収集管(D1-D3)を生成するまで続けた。約5200万精子を、259分で仕分け、約1200万の豊富化されたX精子／仕分けの時間の全体的な収集速度を得た。再懸濁され仕分けられた試料管を、200mLビーカー内の〜120mLの28℃水中で漂遊させ、5℃冷室に入れて、ゆっくり冷却した。
仕分けられた試料が5℃に達した後、仕分けられた精子の３つの管を１つの管に合わせた。プールされた試料を、IVOSによって分析して、% 運動性、% 進行性運動性、および濃度を決定した。10 mM ピルビン酸 pH 6.6を含有するさらなるTriladyl（登録商標）冷凍保存培地を試料に添加して、約5000万精子／mLの最終濃度を得た。仕分けられたプールされた試料中の% X-染色体担持精子は、フローサイトメーター再分析によって決定したところ、87%であった。同じ精液の仕分けられていない試料と比較したIVOS評価の概要を図126に示す。
プールされ仕分けられた試料および第１のアリコートを、5℃冷室中の標準的0.25ccストローにロードした。ロードされたストローを、プログラム可能なフリーザーに移し、以下のプログラムによって冷凍した: 5℃にて5分間、4℃/分にて、5℃から-12℃まで冷却、40℃/分にて、-12℃から-100℃まで冷却、20℃/分にて、-100℃から-140℃まで冷却、-140℃にて維持。ストローが-140℃に達した後、それらをフリーザーからすぐに取り出し、液体窒素に突っ込んだ。
解凍されたストローを、30および120分間、37℃でのインキュベーション後、% 運動性および% 進行性運動性について、IVOSによって分析した。２つの仕分けられたおよび仕分けられていないストローの１組からの結果を図127および図128に要約する。
マルチチャネル仕分け実施例III
雄牛精液を、人工膣を用いて、性的に成熟した雄牛から収集し、精液を２つのアリコートに分けた。250μLの精液の第１のアリコートを、5mLの37℃ Triladyl（登録商標）中に懸濁した。精液の残りを含む第２のアリコートを、２部37℃炭酸緩衝液(２部 水中に0.097モル/LのNaHCO3, 0.173モル/LのKHCO3, 0.090 モル/L C6H8O7・H2O)(pH 6.1-6.2)中に懸濁した。両方のアリコートを、温度制御された容器内で、37℃にて、処理施設に移した。処理施設にて、第１のアリコートを、200mLビーカー内の〜120mLの37℃水中で漂遊させ、冷室に入れて、5℃までゆっくり冷却した。第２のアリコートを、標準的かつよく知られて手順に従って、Hamilton-Thorn運動性アナライザー(IVOS)によって、濃度、運動性および進行性運動性について分析した(Farrell et al. Theriogenology, 49(4): 871-9(Mar 1998))。
150 X 106 精子/mL 精子懸濁液の２つの管を、第２のアリコートから、90000万精子を含有する画分を、２つの空の管の各々に移し、5分間、500 X gにて各管を遠心し、各管から上澄みを除去し、10mM ピルビン酸(pH 7.35)を含有する6mLの28℃ TCA #2緩衝液中で各精子ペレットを再懸濁することによって調製した。水中の10mM Hoechst 33342溶液を、２つの管の各々に添加して、１つの管で、200μM Hoechst 33342 、他の管で、400μM Hoechst 33342の最終色素濃度を得た。２つの管の各々を、約120分間、28℃にて維持した。各管からの精子を、フローサイトメトリーによって分析し、X 集団の総蛍光強度のCVを、対話式コンピューターアルゴリズムを用いて、200μMおよび400μM Hoechst 33342染色条件について決定した。200μMおよび400μM Hoechst 33342に対するCVは、両方とも、約1.3%の許容される範囲内であった。200μM Hoechst 33342の濃度で染色された精子懸濁液を、仕分けに選択した。10μLの25mg/mL FD&C #40を、仕分けの直前に、染色された精子懸濁液のこの管に添加した。
染色された精子懸濁液を、マルチチャネル液滴仕分けフローサイトメーターシステムの１チャネルの試料ポートにロードした。精子懸濁液を、28℃で維持した。マルチチャネル実施例I記載と実質的に同じ器具設定を用いて、XおよびY染色体担持精子を、少なくとも１時間、シース流体で浸漬し、次いで、0.5mLのTriladyl（登録商標）冷凍保存培地(pH 6.6)を添加することによって調製した収集管に、約1800万の精子の豊富化されたX染色体担持細胞集団を入れるのに必要な時間、同時発生打切仕分け戦略を用いるフローサイトメトリーシステムによって分離した。精子細胞を、約25,000および30,000細胞/秒の間の速度にて、フローサイトメトリーシステムに導入した。X染色体担持細胞の豊富化された集団を、4,500／秒から6,000／秒を変動する速度にて収集した。約1800万の精子が収集管に仕分けられると、管を除去し、同様に調製されたもう１つの管と置き換えた。フローサイトメーターから収集管を取り出した直後、仕分けられた精子懸濁液を、700 X gにて、7分間、遠心した。上澄みを、移送ピペットを用いて除去して、約10000万精子/mLの濃度を得た。Triladyl（登録商標）冷凍保存培地(pH 6.6)を、精子懸濁液に添加して、約5000万精子/mLの最終濃度を得た。このプロセスは、フローサイトメーターが２つの収集管(C1-C3)を生成するまで続いた。約3500万の精子を、193分で仕分け、仕分けの１時間当たり、1100万の豊富化されたX染色体担持細胞の全体的な収集速度を得た。再懸濁された仕分けられた試料管を、200mLビーカー内の〜120mLの28℃水中で漂遊させ、5℃の冷室に入れて、ゆっくり冷却した。
仕分けられた試料が5℃に達した後、仕分けられた精子の３つの管を１つの管に組合せた。プールされた試料を、IVOSによって分析して、% 運動性、% 進行性運動性および濃度を決定した。さらなるTriladyl（登録商標）冷凍保存培地(pH 6.6)を試料に添加して、約5000万精子／mLの最終濃度を得た。仕分けられプールされた試料中の% X-染色体担持精子は、フローサイトメーター再分析によって決定されたところでは、88%であった。同じ精液の仕分けられていない試料と比較したIVOS評価の概要を、図129に示す。
プールされ仕分けられた試料および仕分けられていない試料(つまり、上記からの第１のアリコート)を、5℃の冷室内の標準的な0.25ccストローにロードした。ロードされたストローを、プログラム可能なフリーザーに移送し、以下のプログラムによって冷凍した: 5℃にて5分間、4℃/分にて、5℃から-12℃に冷却、40℃/分にて、-12℃から-100℃まで冷却、20℃/分にて、100℃から-140℃まで冷却、-140℃にて維持。ストローが-140℃に達した後、それらを、フリーザーからすぐに取り出し、液体窒素に突っ込んだ。
解凍されたストローを、30および120分間、37℃でのインキュベーション後、% 運動性および% 進行性運動性につき、IVOSによって分析した。仕分けられたおよび仕分けられていないストローの１組からの結果を、図130および図131に要約した。
マルチチャネル仕分け実施例IV
雄牛精液を、人工膣を用いて、性的に成熟した雄牛から収集し、精液を２つのアリコートに分けた。250μLの精液の第１のアリコートを、5mlの37℃ Triladyl（登録商標）中に懸濁した。精液の残りを含む第２のアリコートを、２部37℃炭酸緩衝液(水中に、２部0.097 モル/L of NaHCO3、0.173 モル/L of KHCO3, 0.090 モル/L C6H8O7・H2O)(pH 6.1-6.2)中に懸濁し、CO2下で維持した。両方のアリコートを、温度制御された容器内で、37℃にて、処理施設に移送した。処理施設にて、第１のアリコートを、200mL ビーカー内の〜120mLの37℃水中に漂遊させ、冷室に入れて5℃までゆっくり冷却した。第２のアリコートを標準的かつよく知られた手順に従い、Hamilton-Thorn運動性アナライザー(IVOS)によって、濃度、運動性および進行性運動性について分析した(Farrell et al. Theriogenology, 49(4): 871-9(Mar 1998))。
150 X 106 精子/mL 精子懸濁液の5ml管を、75000万精子を含有する画分を、第２のアリコート(pH 6.1-6.2)から、空の管に移し、最終濃度の5mlまで、28℃炭酸緩衝液(pH 7.35)を添加することによって調製した。この精子懸濁液に、水中の10 mM Hoechst 33342を添加して、最終色素濃度 150μM Hoechst 33342を得た。懸濁液を、CO2下で、41℃にて、約40分間維持し、次いで、仕分けのために28℃にて維持した。10μLの25mg/mL FD&C #40を、仕分けの直前に、染色された精子懸濁液の管に添加した。
染色された精子懸濁液を、マルチチャネル液滴仕分けフローサイトメーターシステムのうちの１チャネルの試料ポートにロードした。精子懸濁液を、28℃にて維持した。XおよびY染色体担持精子を、少なくとも１時間、シース緩衝液で浸漬し、次いで0.5mLのTriladyl（登録商標）冷凍保存培地(pH 6.6)を添加することによって調製された収集管に、約1800万精子の豊富化されたX染色体担持細胞集団を入れるのに必要な時間、同時発生打切仕分け戦略を用いるフローサイトメトリーによって分離した。精子細胞を、約25,000および30,000細胞/秒の間の速度にて、フローサイトメトリーシステムに導入した。X染色体担持細胞の豊富化された集団を、4,500／秒ないし6,000／秒を変動する速度にて収集した。約1800万精子が収集管に仕分けられた時、管を取り出し、同様に調製されたもう１つの管で置き換えた。フローサイトメーターから収集管を取り出した直後、仕分けられた精子懸濁液を、700 X gにて、7分間遠心した。上澄みを、移送ピペットを用いて除去して、約10000万精子/mLの濃度を得た。Triladyl（登録商標）冷凍保存培地およびピルビン酸(pH 6.6)を精子懸濁液に添加して、約5000万精子/mLの最終濃度を得た。このプロセスを、フローサイトメーターが２つの収集管(C2-C3)を生成するまで続けた。再懸濁された仕分けられた試料管を、200mL ビーカー内の〜120mLの28℃水中で漂遊させ、5℃ 冷室に入れてゆっくり冷却した。
仕分けられた試料が5℃に達した後、仕分けられた精子の２つの管を１つの管に合わせた。プールされた試料を、IVOSによって分析して、% 運動性、%進行性運動性および濃度を決定した。さらなるTriladyl（登録商標） 冷凍保存培地およびピルビン酸(pH 6.6)を使用に添加して、約5000万精子／mLの最終濃度を得た。同じ精液の仕分けられていない試料と比較したIVOS評価の概要を、図132に示す。
プールされた仕分けられた試料および仕分けられていない試料(つまり、上記からの第１のアリコート)を、5℃ 冷室中の標準的0.25cc ストローにロードした。ロードされたストローをプログラム可能なフリーザーに移し、以下のプログラムによって冷凍した: 5℃にて5分間、4℃/分にて5℃から-12℃まで冷却する、40℃/分にて-12℃から-100℃まで冷却する、20℃/分にて100℃から-140℃まで冷却する、-140℃にて維持する。ストローが-140℃に達した後、それらをすぐにフリーザーから取り出し、液体窒素に突っ込んだ。
解凍されたストローを、解凍直後および30分間37℃にてインキュベーションした直後、% 運動性および% 進行性運動性について、IVOSによって分析した。１組の仕分けられたおよび仕分けられていないストローからの結果を、図133および図134に要約する。
毛管ノズルシステム
図135は、一般的に1335と示される、ノズルオリフィス103を出て行く流体が、管に向かっておよび管を通って向けられるように、(例えば、石英性または溶融シリカ製の)毛管1337がノズル137に接続されていること以外では上記のものと同様である別のノズルシステムを示す。フローサイトメーターの光学システム109は、管の側面に、既知の屈折率を有する油またはゲルのような光透過媒体で充填されたチャンバー 1341によってのような適当な様式で、光学的に連合される。オープンスペースを通る流体の流れのジェットと比較して、毛管の使用は、変換器 105によって供給される音響エネルギーによって、流れ21のレンズを減少し、フォーカスレンズ1343が発光シグナルの解像度を増加するために、流体の流れのすぐ隣に置くことを可能にするという利点を有する。
粒子が問い合わせられ、分類された後、それらは、図137に示される流体スイッチデバイスまたは光損傷システムまたは液滴仕分けシステムのような他の適当なデバイスによってのような、当業者に知られるいずれかの慣用的な技術を用いて仕分けられてもよい。
液滴仕分け以外の仕分け技術
光損傷仕分け
本発明のフローサイトメトリー改良は、上記の液滴細胞仕分けにだけでなく、光損傷(レーザー切断)による仕分けのような他の仕分け技術にも適用できる。光損傷仕分けは、その全文において本明細書中に援用される米国特許第4,395,397号で論議される。図136は、模式的に、一般的に参照数字によって示される、シングルチャネルフローサイトメトリー光損傷システムの１つの具体例を示す。
図136に示されるように、光損傷仕分けシステム1351は、図2の液滴仕分けシステムと同様であり、対応する部分は、ダブルプライム(")を加えられた対応する参照数字によって示される。一般的には、システムは、液滴仕分け部材が除去される(例えば、変換器105、電荷デバイス627、偏光板629、および関連した電力源635)こと以外は、図2のシステムと同じ部材を含む。代わりに、これらの部材は、レーザー1353あるいは流体のマイクロプロセッサー131''から受け取られる流れ21''中の望ましくない粒子を除去するための指示に応答する同様のデバイスによって置き換えられる。結果として、収集容器1355中に収集された流れは、粒子の所望の集団を含有する。例えば、もし分析される粒子が精子細胞であり、意図される結果が、特徴A(例えば、所望の染色体含有量)を有する精子細胞を収集することであれば、マイクロプロセッサーは、特徴Aを有しない細胞を同定する落射照明システム415''からシグナルを受け取り、選択的にレーザーを作動させて、そのような細胞を除去するかあるいはさもなければそれらを無力にする。
異なる制御仕分け戦略を、液滴ソーターの文脈において上記で論議した「高回収」および「高純度」仕分け戦略を含む光損傷システムにおいて使用することができる。光損傷システムにおいて、流体の流れ中に含有された粒子を、流れに沿って、様々な間隔で置き、一般的に、単一ファイルで次々に続く。粒子は異なる特徴を有し、いくつかは特徴Aを有し、例えば他は特徴Bを有する。粒子の配列はランダムであり、連続処理として見ると、粒子は、一方が他方に続く、異なる粒子シリーズに分けることができ、特徴Aを有する１以上の粒子のみからなる第１の粒子シリーズ、特徴Bを有する１以上の粒子のみからなる第２の粒子シリーズ、およびその少なくとも１つが特徴Aを有し、その少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子よりなる第３の粒子シリーズを含む。後者(第３)の群は、一般的には、少なくとも仕分け方法目的のために、先述の「同時」液滴において近接にして間隔を設けられた粒子に対応する。従って、第３の群における２以上の粒子は、粒子間の空間的分離が粒子の正確な区別／分類を可能とするには不十分であるという意味で、あるいはそのような分離は、同一シリーズ中の他の粒子を損なうことなくシリーズ中の１つの粒子が融和されるには不十分である故に、第３のシリーズ中の２以上の粒子は近接して間隔を設けられている。いずれにしても、第３のシリーズの粒子の各々（あるいは少なくとも１いくつか）における近接して間隔を設けられた粒子は、使用される仕分け方法によって除去されてもあるいは除去されなくてもよい。第１のシリーズの複数の粒子または第２のシリーズの複数の粒子は、「近接して間隔を設けられ」てもよいが、いずれのそのようなシリーズの粒子も、同じ特徴（AまたはB)を有するため、それらは、少なくとも仕分け方法目的のため、単一粒子シリーズとして処理されることが留意されるべきである。
光損傷システムは、上記のように、シングルチャネルシステムであってもあるいはマルチチャネルシステムであってもよい。
流体スイッチ仕分け
本発明の原理を、例えば、その全文において本明細書中に援用される米国特許第6,432,246(Adair)号、同第4,756,427号(Gohde, et al.)、および同第 3,791, 517号(Friedman)に開示されるように、流体スイッチ技術を用いるフローサイトメトリーシステムにも適用可能であることが考えられる。図137は、一般的に1357と示されるそのようなシステムを示す部分図である。ノズルシステム101''が毛管 1369(例えば、図135参照)を含み、仕分けシステムが問い合わせ位置 115'から下流の毛管 1369にカップリングされた流体スイッチデバイス 1359を含む以外は、図2に示されるシステムと実質的に同一である。流体スイッチデバイスの構築および操作は、上記で援用された特許において開示されるように、いずれの慣用的な流体スイッチ技術も援用し得る。一般的には、プロセッサーから受け取られた指示に応答して、望ましくない粒子から所望の粒子を仕分けるように、容器中の収集用の別々の流路1361、1365等に沿って、所望の/望ましくない粒子を含有する流体の流れの部分を、間欠的に転換することによって機能する。スイッチは、流路のうちの１つにおける変換器 1367を選択的に動かすことによって一般的に達成される。
液滴仕分けおよび光損傷仕分けに関する上記の様々な仕分け戦略は、流体スイッチシステムにおいても使用可能である。流体スイッチシステムにおいて、流体の流れ中に含有される粒子は、流れに沿った様々な間隔を設けられ、一般的には、単一ファイルで次々に続く。粒子は異なる特徴を有し、いくつかは特徴Aを有し、例えば他は特徴Bを有し、粒子の配列はランダムである。従って、光損傷システムに関して上記論議のように、粒子の列は、一方が他方に続く、異なる粒子シリーズに分けることができ、特徴Aを有する１以上の粒子のみからなる第１の粒子シリーズ、特徴Bを有する１以上の粒子のみからなる第２の粒子シリーズ、およびその少なくとも１つが特徴Aを有し、その少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子よりなる第３の粒子シリーズを含む。後者(第３)の群は、一般的には、少なくとも仕分け方法目的のために前述の「同時」液滴において、近接して間隔を設けられた粒子に対応する。従って、第３の群における２以上の粒子は、粒子間の空間的分離が、粒子の正確な区別／分類を可能とするには不十分であるという意味で、あるいはそのような分離が、シリーズ中の１つの粒子が、同一シリーズ中のもう１つの粒子とは別に流体スイッチデバイスによって方向転換されるのを可能とするのには不十分である故に、近接して間隔を設けることができる。いずれにしても、第３のシリーズの粒子の各々（あるいは少なくともいくつか）において近接して間隔を設けられた粒子は、使用される仕分け方法によって、１つの収集位置またはもう１つに分けられる。光損傷仕分けと関連して上記で説明したように、第１のシリーズの複数の粒子または第２のシリーズの複数の粒子は、「近接して間隔を設けられ」てもよいが、いずれのそのようなシリーズの粒子は同じ特徴（AまたはB)を有するため、それらは仕分け方法の目的のために、単一粒子シリーズとして処理される。
流体スイッチシステムは、上記で論議のように、シングルチャネルシステムであってもあるいはマルチチャネルシステムであってもよい。
液滴干渉仕分け
また、本発明の技術を、液滴干渉流体スイッチ技術と併せて使用することができると考えられる。例えば、図138において模式的に示される高速液滴干渉仕分けシステム1371を使用して、同軸キャリアーおよびシース流体流れの選択されたセグメントを転換することによって、粒子を仕分けてもよい。
いくつかの他の仕分け技術と比較して、液滴干渉仕分け技術は、液滴へと形成される同軸キャリアーおよびシース流を要さない。従って、キャリアーおよびシース流体の送達のために、液滴発生システムと使用されるノズルシステム101'''をカップリングさせる必要はない。ほんの一例として、キャリアーおよびシース流体を60 psiにてノズルシステムを通過させて、50ミクロン直径流れを作るのは、液滴干渉仕分けシステムへ粒子を送達するための層流同軸流体の流れの形成のための１つの適当な準備である。同軸流体の流れ中の粒子は、他の仕分けシステムについて上記したように、それらが問い合わせ位置 115'''を通過する時に、光学システム 109'''およびプロセッサー131'''によって分析され分類される。仕分けは、問い合わせ位置から下流で、同軸流体の流れが高速液滴干渉流1373と交差する位置で起こる。
液滴干渉流1373は、液滴仕分けに使用される液滴発生システムと同様の液滴発生システム 1375によって発生される。高速流体の流れ1379は、圧電変換器 1381または高速ノズルから下流で、液滴 1383に分かれる高速流体の流れを引き起こす音響エネルギーの他の源にカップリングされる高速ノズルシステム 1377を通過する。例えば、1500 psiの粒子-無しの流体は、高速ノズルを通過して、70 ミクロン直径高速流体ジェットを形成してもよい。高速ノズルは、400 KHzにて振動して、高速液滴を形成してもよい。高速液滴 1383は、高速液滴の経路が、液滴仕分けシステムにおいて液滴の経路を制御するのになされたように、液滴に電荷を選択的に適用することによって制御され得るように、１以上の電気偏光プレートによって生じる電界を通過する。高速液滴干渉流は、いくつかの高速液滴が、問い合わせ位置から下流の地点1399にて、同軸流体の流れと交差するように向けられる。例えば、荷電されていない液滴 1389は、荷電された液滴 1391が同軸流体の流れから偏向される間、流体の流れと衝突するように向けられてもよい。高速液滴が同軸流体の流れと衝突するとき、流体の流れのセグメント 1397およびその中に含有されるいずれかの粒子は、さもなければそれらがとったであろう経路から転換される。電荷の高速液滴への適用または適用無しは、同軸流体流との交差 1399におけるその液滴の到着が、同軸流体流の特定のセグメントの到着と一致するようにタイミングを調節することができる。従って、同軸流セグメント内に含有される粒子の分類によって、高速液滴を選択的に荷電することによって、１以上の選択された粒子を含有する全ての同軸流体の流れセグメンを転換し、他の同軸流セグメントを転換しないあるいはその逆によって、粒子を仕分けることができる。僅かな真空を有する収集毛管を使用して、転換された1397および転換されていない同軸流セグメントの両方を収集してもよい。液滴干渉仕分けシステムを、高速液滴が転換された同軸流セグメントと融合するように、あるいは高速液滴が同軸流セグメントとの衝突後、転換された流れセグメントから分離したあっまであるように設定してもよい。
高速液滴干渉流1373中には粒子または細胞が存在しないため、仕分けられる粒子または細胞を損傷せずに、非常に高い圧力および非常に高い液滴周波数を使用することが可能である。これによって、各々が液滴仕分けシステム中の液滴より少ない容量（例えば、４倍少ない容量）を有する流れセグメントの分類が可能である。これは、仕分けられた粒子の希釈因子も減少しつつ、システムの最大スループットを非常に増加させる。さらに、細胞無しまたは有りの細かく濾過された粒子を使用して、液滴干渉流を形成するため、液滴形成ノズルは、液滴仕分けシステムにおいて使用されたノズルシステムより蛋白質蓄積で詰まるまたはそれに悩む可能性が低いため、より均質の液滴形成が可能である。もう１つの利点は、問い合わせ位置での粒子分析および仕分け地点1399の間の距離を減らすことができ(例えば、４倍で)、仕分け地点での特定の粒子の到着の時間のより正確な予測が可能になることである。さらに、液滴干渉システムは、同軸流体の流に対するノズルサイズまたは圧力の調整においてより柔軟性を可能にする。所望により、液滴干渉仕分けシステムを毛管ノズルシステムと組み合わせることができる。マルチチャネル液滴干渉仕分けシステムは、高圧流体ポンプを使用して、共通流体供給からの流体を持つノズルを生じる複数の液滴干渉流を供給してもよい。
本発明の要素またはその（複数の）具体例を紹介する時、冠詞「a」、 「an」、「the」、 および「said」は、１以上の要素が存在することを意味するように意図される。用語「含む（comprising）」、「含む（including）」、および「有する（having）」は、包括的であるように意図され、リストされた要素以外のさらなる要素が存在し得ることを意味する。用語「または」は、「および／または」を含むように意図され、「１またはもう１つまたは両方」を意味するように意図される。したがって、「ABCまたはDEF」の表示は、(1) ABC、または(2) DEF、または(3)ABCおよびDEFの両方を意味する。用語「および／または」は、上記定義のように「または」と同じ意味を有するように意図される。従って、用語「および／または」は、「または」を含むように意図され、「１またはもう１つまたは両方」を意味するように意図される。例えば、「ABCおよび／またはDEF」の表示は、(1) ABC、または(2) DEF、または(3) ABCおよびDEFの両方を意味する。
上記に鑑みて、本発明のいくつかの目的が達成され、他の有利な結果が得られることが分かるであろう。
本発明の範囲から逸脱せずに、上記構築、製品、および方法において、様々な変更をなすことが出来るように、上記記載および添付の図面に示されるに含有される全ての事は、制限する意味ではなく、説明として解釈されるべきである。
発明の特徴に関するコメント
当業者は、上記の発明が、少なくとも次を含む多くの発明の態様を含むことを認識するであろう。
A.マルチチャネル仕分け装置
A1. 粒子の１以上の特徴に従い、粒子を仕分けるためのマルチチャネルシステムであって:
各々が、電磁放射線のビームを用いて該粒子を含有する流体の流れを問い合わせることによって、粒子の混合物中の粒子の所望の集団を仕分けるように操作可能な複数のフローサイトメトリーユニットを含み;
該ユニットが次の要素:(1)粒子の共通供給;(2)電磁放射線の共通源;(3)共通ハウジング;(4)ユニットの操作を制御するための共通インプット;(5)ユニットからの情報を受け取り処理するための共通プロセッサー;および(6)該粒子を含有する流体を、該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通流体送達システムのうちの少なくとも１つを含む統合プラットホームを共有することを特徴とする該システム。
A2.該粒子が細胞であるA1記載のシステム。
A3.該粒子が精子細胞であるA1記載のシステム。
該システムが、少なくとも要素(2)を含み、１以上の該複数のフローサイトメトリーユニットが、ジェットインエアー液滴仕分けフローサイトメトリーユニットを含むA1記載のシステム。
A5.該統合プラットホームが、少なくとも要素(2)および(3)を含むA1記載のシステム。
A6.該統合プラットホームが、少なくとも要素(4)および(5)を含むA1記載のシステム。
A7. 該統合プラットホームが、少なくとも要素(2)を含み、ここに該共通源が単一のレーザービームを含むA1記載のシステム。
A8.さらに、単一のレーザービームを複数のビームに分け、複数のビームを、それぞれのフローサイトメトリーユニットの光学システムに向けるためのビーム分割システムを含むA7記載のシステム。
A9.該単一レーザービームが複数のパルスを含み、ここに各パルスがレーザーの平均電力アウトプットより大きいピーク電力を有するA8記載のシステム。
A10.該統合プラットホームが、少なくとも要素(3)を含み、ここに該フローサイトメトリーユニットがハウジングに取り外し可能に取り付けられた取り替え可能なモジュールを含むA1記載のシステム。
A11.各フローサイトメトリーユニットが、それぞれの流体の流れを問い合わせるための落射照明光学システムを含むA1記載のシステム。
A12.さらに、各ユニットから粒子の該所望の集団を収集するための収集システムを含むA1記載のシステム。
A13.該統合プラットホームが、少なくとも要素(5)を含み、ここに該共通アウトプットが各ユニットによって測定された蛍光強度の指標を含むA1記載のシステム。
A14.該統合プラットホームが、少なくとも要素(5)を含み、ここに該共通アウトプットが、各ユニットが粒子を分離する速度の指標を含むA1記載のシステム。
A15. 該統合プラットホームが、少なくとも要素(5)を含み、ここに該共通アウトプットが粒子染色変動の指標を含むA1記載のシステム。
A16. 該統合プラットホームが、少なくとも要素(5)を含み、ここに該共通アウトプットが粒子間を識別する各ユニットによって使用される決定境界の指標を含むA1記載のシステム。
A17.該フローサイトメトリーユニットの各々が液滴仕分けシステムを含むA1記載のシステム。
A18.該統合プラットホームが、少なくとも要素(5)を含み、ここに該共通アウトプットが各ユニットの液滴破壊位置の指標を含むA1記載のシステム。
A19.該フローサイトメトリーユニットのうちの少なくとも１つが光損傷システムを含むA1記載のシステム。
A20.少なくとも１つの該フローサイトメトリーユニットが、流体スイッチ仕分けシステムを含むA1記載のシステム。
A21.該フローサイトメトリーユニットが平行に作業するように適合されるA1記載のシステム。
A22.統合プラットホームが、各パルスがレーザーの平均力を超えるピーク力を有する複数の電磁放射線パルスを発光するように操作可能な少なくとも１つの共有レーザーを含むA1記載のシステムであって:
試料粒子を含有する流体の流れを、粒子問い合わせ位置を通って向けるためのフローチャネル;
パルス中の電磁放射線の一部を問い合わせ位置に向けるように操作可能なビームガイダンスシステム;
問い合わせ位置での電磁放射線の到着を示すタイミングシグナルを生成するように操作可能なタイミング回路;
問い合わせ位置から電磁放射線を検出するように適合され、検出された電磁放射線の強度を示す時変アナログシグナルを出力するように操作可能な検出器;
時変アナログシグナルをインプットとして受け取り、アナログシグナルをサンプリングして、デジタル化されたアウトプットを生成するように適合されたアナログ・デジタル変換器;および
アナログ・デジタル変換器からのデジタル化されたアウトプットを、タイミングシグナルの関数として分析するように操作可能な電子プロセッサー
を含む１以上の該フローサイトメトリーユニット。
A23.複数のフローサイトメトリーユニットが、３以上のフローサイトメトリーユニットを含むA1記載のシステム。
A24.複数のフローサイトメトリーユニットが、少なくとも１２のフローサイトメトリーユニットを含むA1記載のシステム。
A25.統合プラットホームが、少なくとも要素(5)を含み、共通プロセッサーが:(1)リアルタイムで該情報を受け取り処理し;次いで(2)該情報を受け取り処理して、もう１つのユニットに対する１つのユニットの操作の評価を可能にすることのうち少なくとも１つを実施するクレームA1記載のシステム。
A26.各フローサイトメトリーユニットが、粒子の少なくとも１つの特徴を示す時変アウトプットシグナルを発生するように操作可能なセンサーを含み、該統合プラットホームは、少なくとも要素(5)を含み、共通プロセッサーによって受け取られた該情報は、それぞれのセンサーからのアウトプットシグナルを含み、プロセッサーはアウトプットシグナルを実質的に連続した流れとして受け取り、リアルタイムでアウトプットシグナルを実質的に連続して処理するように操作可能であるA1記載のシステム。
A27. 該統合プラットホームが、仕分けプロセスの間、リアルタイムで、フローサイトメトリーユニットに制御シグナルを送って、それらの操作を、共通プロセッサーによって受け取られた該情報の関数として調整するように操作可能であり、フローサイトメトリーユニットが制御シグナルに応答するA1記載のシステム。
B.マルチチャネル仕分け方法
B1. 粒子の１以上の特徴に従って、粒子を仕分けるマルチチャネル方法であって:
複数のフローサイトメトリーユニットを供し;
該フローサイトメトリーユニットを操作して、複数のフローサイトメトリー操作を実施し、ここに該操作は、各々が粒子の混合物を含有する別々の流体の流れを形成し、粒子の該混合物中の粒子の所望の集団を、電磁放射線のビームを用いて流れを問い合わせることによって仕分け;次いで
該操作を実施する間、以下の要素のうちの少なくとも１つの共有する:(1)該流れに対する粒子の共通供給;(2) 該ビームに対する電磁放射線の共通源;(3)共通操作制御インプット;(4) ユニットから情報を受け取り処理するための共通プロセッサー;(5)該流れに流体を送達するための共通システム; および(6)該フローサイトメトリーユニットのための共通ハウジング
ことを特徴とする該方法。
B2.該粒子が細胞であるB1記載の方法。
B3.該粒子が精子細胞であるB1記載の方法。
B4.少なくとも１つの該マルチプルフローサイトメトリーユニットが、ジェットインエアー液滴仕分けフローサイトメトリーユニットを含むB1記載の方法。
B5.さらに、単一レーザービームの形態で、電磁放射線の該共通源を少なくとも共有することを特徴とするB1記載の方法であって、さらに、単一のレーザービームを複数のビームに分割し、複数のビームをそれぞれのフローサイトメトリーユニットの光学システムに向けることを特徴とする該方法。
B6.単一のビームのビーム光のパーセンテージを、該フローサイトメトリーユニットのうちの１つの光学システムに向かって反射させ、該フローサイトメトリーユニットのもう一方の光学システムに伝達するための単一ビームのビーム光のあるパーセンテージを通すことを特徴とするB5記載の方法。
B7.さらに、固体レーザーを用いて、該単一のレーザービームを形成することを特徴とするB6記載の方法。
B8.さらに、単一のレーザービームが、複数のパルスを含むように固体レーザーをモードロックすることを特徴とし、ここに各パルスが、レーザーの平均電力アウトプットより大きいピーク電力を有するB7記載の方法。
さらに、少なくとも要素(6)を共有することを特徴とするB1記載の方法であって、さらに、共通ハウジングに、該フローサイトメトリーユニットを取り外し可能に取り付けることを特徴とする該方法。
B10.さらに、共有されたレーザーの形態で、電磁放射線の該共通源を少なくとも共有することを特徴とするB1記載の方法であって;さらに:
レーザーからの複数の電磁放射線(EMR)パルスを発光し、ここに各パルスのピーク電力は、レーザーの平均電力を超え;
各パルスをビーム分割およびガイダンスシステムに向けて、その中に含有される各流体の流れおよび粒子を、レーザーから各問い合わせ位置へのビーム経路に沿って、パルスのエネルギーの一部を向けることによって間欠的に照明し;
少なくとも１つの問い合わせ位置からのEMRを検出し;
該問い合わせ位置から検出されたEMRの強度を示す時変アナログシグナルを発生し;
該問い合わせ位置にて、パルスの到着を示すタイミングシグナルを発生し;
時変アナログシグナルをデジタルシグナルに変換し;次いで
デジタルシグナルを分析して、それぞれの問い合わせ位置を通って流れる流体の流れ中の粒子の特徴を決定する工程を含む該方法。
B11.さらに、該操作の第１の操作における第１の仕分け方法および該操作の第２の操作における第１の仕分け方法と異なる第２の仕分け方法を用いることを特徴とするB1記載の方法。
B12.さらに、各フローサイトメトリーユニットによって仕分けられた所望の粒子の集団を収集し、異なるユニットから収集された集団と、１つのユニットから収集された集団を組み合わせて、所望の粒子の混合集団を生成することを特徴とするB1記載の方法。
B13.さらに、流体が、次:(1)第１の仕分けられた集団の純度;および(2)第２の集団中の所望の粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として、１以上のフローサイトメトリーユニットに送達される速度を変動させることを特徴とするB1記載の方法。
B14.さらに、該フローサイトメトリー操作を並列接続で実施することを特徴とするB1記載の方法。
B15. 共有工程が少なくとも要素(4)を共有することを含むB1記載の方法であって、さらに、共通プロセッサーを使用して、以下:(1)リアルタイムで、該情報を受け取り処理し; 次いで(2)該情報を受け取り処理して、もう一方のユニットに対する１つのユニットの操作の評価を可能にするのうちの少なくとも１つを行うことを特徴とする該方法。。
B16. 共有工程が少なくとも要素(4)を共有することを含むB1記載の方法であって、さらに、各それぞれのサイトメトリーユニットに対するセンサーを用いて、粒子の少なくとも１つの特徴を示す時変アウトプットシグナルを発生し、共通プロセッサーを用いて、それぞれのアウトプットシグナルを、実質的に連続した流れとして受け取り、リアルタイムでアウトプットシグナルを処理することを特徴とする該方法。
B17. 共有工程が少なくとも要素(4)を共有することを含むB1記載の方法であって、さらに、制御シグナルを、仕分けプロセスの間、リアルタイムで、１以上のフローサイトメトリーユニットに送って、ユニットの操作を、共通プロセッサーによって受け取られた情報の関数として調整することを特徴とする該方法。
C.留保
D.マルチチャネルアナライザー
D1. 粒子の１以上の特徴に従って、粒子を分類するためのマルチチャネルシステムであって:
各々が、粒子の混合物中の粒子を、電磁放射線のビームを用いる該粒子を含有する流体の流れを問い合わせることによって分類するように操作可能な複数のフローサイトメトリーユニット、
以下の要素のうちの少なくとも１つを含む統合プラットホームを共有する該ユニット:(1)粒子の共通供給;(2)共通ハウジング;(3)ユニットの操作を制御するための共通インプット;(4)ユニットから情報を受け取り処理するための共通プロセッサー;および(5)該粒子を含有する流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通流体送達システムを含む該システム。
D2.該統合プラットホームが、さらに、電磁放射線の共通源を含むD1記載のシステム。
D3.該粒子が細胞であるD1記載のシステム。
D4.該粒子が精子細胞であるD1記載のシステム。
D5.該統合プラットホームが、少なくとも要素(3)および(4)を含むD1記載のシステム。
D6.該統合プラットホームが、さらに、電磁放射線の共通源を含むD5記載のシステム。
D7.該統合プラットホームが、さらに、電磁放射線の共通源を含み、ここに、該共通源が単一のレーザービームを含むD1記載のシステム。
D8. さらに、単一のレーザービームを複数のビームに分け、複数のビームをそれぞれのフローサイトメトリーユニットの光学システムに向けるためのビーム分割システムを含むD7記載のシステム。
D9.該統合プラットホームが、少なくとも要素(2)を含み、ここに該フローサイトメトリーユニットが、ハウジングにおいて、取り外し可能に取り付けられた互換性のあるモジュールを含むD1記載のシステム。
D10.各フローサイトメトリーユニットがそれぞれの流体の流れを問い合わせるための落射照明光学システムを含むD1記載のシステム。
D11.該統合プラットホームが、少なくとも要素(4)を含み、ここに該プロセッサーが各ユニットによって測定される蛍光強度の指標を出力するのに操作可能であるD1記載のシステム。
D12.該統合プラットホームが、少なくとも要素(4)を含み、ここに該プロセッサーが、各ユニットが粒子を分離する速度の指標を出力するように操作可能であるD1記載のシステム。
D13.該統合プラットホームが、少なくとも要素(4)を含み、ここに該プロセッサーが粒子染色変動の指標を出力するように操作可能であるD1記載のシステム。
D14.該統合プラットホームが、少なくとも要素(4)を含み、ここに該プロセッサーが粒子間を識別するための各ユニットによって使用される決定境界の指標を出力するように操作可能であるD1記載のシステム。
D15.該フローサイトメトリーユニットが平行に操作するように適合されるD1記載のシステム。
D16.該複数のフローサイトメトリーユニットが粒子を仕分けるのに操作可能であるD1記載のシステム。
D17.統合プラットホームが、さらに、電磁放射線の共通源を含み、ここに該複数のフローサイトメトリーユニットがジェットインエアー液滴仕分けフローサイトメトリーユニットを含むD16記載のシステム。
D18. 該統合プラットホームが、少なくとも要素(4)を含み、ここに共通プロセッサーが次:(1)リアルタイムで該情報を受け取り処理し;次いで(2)該情報を受け取り処理して、もう一方のユニットに対する一方のユニットの操作の評価を可能にするのうちの少なくとも１つを実行するのに操作可能であるD1記載のシステム。
D19.各フローサイトメトリーユニットが、粒子の少なくとも１つの特徴を示す時変アウトプットシグナルを発生するように操作可能であり、該統合プラットホームが少なくとも要素(4)を含み、共通プロセッサーによって受け取られた該情報がそれぞれのセンサーからのアウトプットシグナルを含み、プロセッサーが、アウトプットシグナルを、実質的に連続した流れとして受け取って、リアルタイムで、アウトプットシグナルを処理するように操作可能であるD1記載のシステム。
D20. 該統合プラットホームが、仕分けプロセスの間、リアルタイムで、フローサイトメトリーユニットに制御シグナルを送って、それらの操作を、共通プロセッサーによって受け取られた該情報の関数として調整するように操作可能である共通プロセッサーを含み、ここにフローサイトメトリーユニットは、制御シグナルに応答するD1記載のシステム。
E.マルチチャネル分析方法
E1. 粒子の１以上の特徴に従って、粒子を分類するマルチチャネル方法であって:
複数のフローサイトメトリーユニットを供し;
該フローサイトメトリーユニットを操作して、複数のフローサイトメトリー操作を実行し、ここに該操作は、各々が粒子の混合物を含有する別々の流体の流れを形成し、粒子の該混合物中の粒子を、電磁放射線のビームを用いて、流れを問い合わせることによって分類し;次いで
以下の要素:(1)該流れに対する粒子の共通供給;(2) 共有操作制御インプット;(3) ユニットからの情報を受け取り処理するための共通プロセッサー;(4)該流れに流体を送達するための共通システム;および(5)該フローサイトメトリーユニットに対する共通ハウジングのうちの少なくとも１つを共有して、該操作を実行することを特徴とする該方法。
E2.さらに、該ビームに対する電磁放射線の共通源を共有することを特徴とするE1記載の方法。
E3.該複数のフローサイトメトリーユニットが、ジェットインエアー液滴仕分けフローサイトメトリーユニットを含むE2記載の方法。
E4.さらに、該複数のフローサイトメーターを操作して、分類に基づき、粒子の該混合物を仕分けることを特徴とするE1記載の方法。
E5.該粒子が細胞であるE1記載の方法。
E6.該粒子が精子細胞であるE1記載の方法。
E7.さらに、単一レーザービームの形態で、該ビームに対する電磁放射線の共通源を共有し、単一レーザービームを複数のビームに分け、次いで、複数のビームをそれぞれのフローサイトメトリーユニットの光学システムに向けることを特徴とするE1記載の方法。
E8.共有工程が、少なくとも要素(5)を含むE7記載の方法であって、さらに、ビームを分ける前に、該単一レーザービームを、該共通ハウジングにガイドすることを特徴とする該方法。
E9.さらに、単一のビームのビーム光のあるパーセンテージを、該フローサイトメトリーユニットのうちの１つの光学システムに向かって反射させ、該フローサイトメトリーユニットのもう一方の光学システムに伝達するための単一ビームのビーム光のあるパーセンテージを通すことを特徴とするE7記載の方法。
共有工程が少なくとも要素(5)を含むE1記載の方法であって、さらに、共通ハウジングの該フローサイトメトリーユニットを取り外し可能に取り付けることを特徴とする該方法。
E11.各フローサイトメトリーユニットを操作して、落射照明光学システムを用いて、それぞれの流体の流れを問い合わせることを特徴とするE1記載の方法。
E12.さらに、平行に該フローサイトメトリーユニットを操作することを特徴とするE1記載の方法。
E13.該複数のフローサイトメトリーユニットが１２以上のフローサイトメトリーユニットを含むE1記載の方法。
E14.共有工程が少なくとも要素(4)を共有することを含むE1記載の方法であって、さらに、共通プロセッサーを使用して、以下の:(1)リアルタイムで、該情報を受け取り処理し; 次いで(2)該情報を受け取り処理して、もう一方のユニットに対する１つのユニットの操作の評価を可能にするのうちの少なくとも１つを行うことを特徴とする該方法。
E15. 共有工程が少なくとも要素(4)を共有することを含むE1記載の方法であって、さらに、各それぞれのサイトメトリーユニットに対するセンサーを用いて、粒子の少なくとも１つの特徴を示す時変アウトプットシグナルを発生し、共通プロセッサーを用いて、それぞれのアウトプットシグナルを、実質的に連続した流れとして受け取り、リアルタイムでアウトプットシグナルを処理することを特徴とする該方法。
E16. 共有工程が少なくとも要素(4)を共有することを含むE1記載の方法であって、さらに、制御シグナルを、仕分けプロセスの間、リアルタイムで、１以上のフローサイトメトリーユニットに送って、ユニットの操作を、共通プロセッサーによって受け取られた情報の関数として調整することを特徴とする該方法。
F.[保留]
G. マルチチャネルサイトメトリーに対する単一レーザーを分割する方法
G1.各々が、粒子の混合物からの粒子の所望の集団を、光のビームを用いて該粒子を含有する流体の流れを問い合わせることによって仕分けるように操作可能である３以上のフローサイトメトリーユニットを含むシステムを用いて粒子を仕分ける方法であって:
単一レーザービームを発生させ;
単一のビームを、３以上の光ビームに分割し、フローサイトメトリーユニットの光学システムに光ビームを向け;次いで
フローサイトメトリーユニットを操作して、粒子を仕分けることを特徴とする該方法。
G2.各サイトメトリーユニットが大体同じ強度の光ビームを有する流体の流れを問い合わせることを特徴とするG1記載の方法。
G3.各ユニットがWワットの電力を有する光ビームを必要とするG1記載の方法であって、ここに、さらに、(W x N) + L［式中、 Nはフローサイトメトリーユニットの数と同等であり、Lはシステムにおける電力喪失に等しい］の電力を有する該単一レーザービームを生じることを特徴とする該方法。
G4. サイトメトリーユニットによって使用されるビーム光の量をバランスさせて、１以上のフィルターを用いることによって、それぞれの流体の流れを問い合わせて、少なくとも１つの該３以上の光ビームの強度を弱めることを特徴とするG1記載の方法。
G5.さらに、各ユニットが、10%の耐性内のビーム光の同一量を受け取るように、それぞれのユニットに進入するビーム光の強度を調整することを特徴とするG4記載の方法。
G6.該フローサイトメトリーユニットのうちの少なくとも１つが、液滴仕分けプロセスを用いて、該粒子を仕分けるG1記載の方法。
G7.該フローサイトメトリーユニットのうちの少なくとも１つが光損傷プロセスを使用して、該粒子を仕分けるG1記載の方法。
G8.少なくとも１つの該フローサイトメトリーユニットが流体スイッチ仕分けプロセスを用いて、該粒子を仕分けるG1記載の方法。
G9. 該フローサイトメトリーユニットが共通ハウジング内に取り付けられるG1記載の方法であって、さらに、ビームを分ける前に、該単一レーザービームを該共通ハウジングにガイドすることを特徴とする該方法。
G10. さらに、単一のレーザービームのビーム光のあるパーセンテージを、該フローサイトメトリーユニットのうちの１つの光学システムに向かって反射させ、該フローサイトメトリーユニットのもう一方の光学システムに伝達するための単一レーザービームのビーム光のあるパーセンテージを通すことを特徴とするG9記載の方法。
G11. 単一ビームを分割する工程が、単一ビームを、４つの別々のビームに分割することを含むG1記載の方法。
G12.分割工程が、50/50ビームスプリッターを用いて、単一ビームを２つのビームに分割し、第２の50/50ビームスプリッターを用いて、２つのビームのうちの１つを２つのさらなるビームに分割し、第３の50/50ビームスプリッターを用いて、２つのビームのうちの他方を、２つのよりさらなるビームに分割することを含むG11記載の方法。
H.仕分け戦略を用いる仕分けのための装置
H1. 特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けるためのフローサイトメトリーシステムであって、該粒子を含有する流体を送達するための流体送達システム、それを流れへと形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類する該流体を受け取るためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供する仕分けシステムを含む該システムにおいて、仕分けシステムを制御して、その仕分け戦略を変更するか、あるいは流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動するためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする改良。
H2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するH1記載のシステム。
H3.粒子が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるH1記載のシステム。
H4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であるH3記載のシステム。
H5. さらに、該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満にて維持することを含むH4記載のシステム。
H6. 該制御が、該純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、該純度が該所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させるH1記載のシステム。
H7.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団の純度を決定し、該システムは、さらに、所望の純度を示すための該制御へのオペレーターインプットを含み、ここに該制御は、純度が所望の純度に対応するように、流体送達の速度を変動するH1記載のシステム。
H8. 該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量より大きい時に、制御は流体送達の速度を増加させ、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、該許容される量未満である時に、制御が流体送達の速度を減少させるH7記載のシステム。
H9.該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量を決定し、該システムは、さらに、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量を示すための制御へのオペレーターインプットを含み、ここに制御は、流体送達速度を変動して、該少なくとも１つの集団中の該許容される量を得ることを含むH8記載のシステム。
H10. 該流れが、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成されたH1記載のシステム。
H11. 該仕分けシステムが、該第１の粒子組が該少なくとも１つの集団における収集のために選択され、該第２および第３の粒子組が該少なくとも１つの集団のために選択される仕分け方法を使用するように操作可能であるH10記載のシステム。
H12. 該仕分けシステムが、該第１および第３の粒子組が、該少なくとも１つの集団における収集のために選択され、該第２の粒子組が該少なくとも１つの集団における収集のために選択されない仕分け方法を使用するように操作可能であるH10記載のシステム。
H13.該仕分けシステムが液滴仕分けシステムを含むH1記載のシステム。
H14.該仕分けシステムが光損傷仕分けシステムを含むH1記載のシステム。
H15.該仕分けシステムが流体スイッチ仕分けシステムを含むH1記載のシステム。
I. 仕分け方法を用いて粒子を仕分けるための方法
I1.フローサイトメトリーシステムを用いて特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体を送達し;
流体を流れへと形成し、フローサイトメトリーを使用して、該特徴に従って流れにおける粒子を分類し;
該分類およびそれによる仕分け戦略に従って、流れにおける粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供し;次いで
仕分け戦略を変更し、または流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動することを特徴とする該方法。
I2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するI1記載の方法。
I3.該粒子が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるI1記載の方法。
I4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であるI3記載の方法。
I5.該純度を85%以上95%未満にて維持することを特徴とするI3記載の方法。
I6. さらに、該少なくとも１つの該純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、該純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させることを特徴とするI1記載の方法。
I7.さらに、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量より大きい時に流体送達の速度を増加させ、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が該許容される量より少ない時に、流体送達の速度を減少させることを特徴とするI1記載の方法。
I8. 該流れを、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成することを特徴とするI1記載の方法。
I9.さらに、第１の粒子組のみが該少なくとも１つの集団における収集に選択される仕分け方法によって、該粒子を仕分けることを特徴とするI8記載の方法。
I10.さらに、第１および第３の粒子組が、該少なくとも１つの集団における収集のために選択される仕分け方法に従って、該粒子を仕分けることを特徴とするI8記載の方法。
I11. 該仕分けが液滴仕分けプロセスを使用することを特徴とするI1記載の方法。
I12.該仕分けが、光損傷仕分けプロセスを使用することを特徴とするI1記載の方法。
I13.該仕分けが流体スイッチ仕分けプロセスを用いることを含むI1記載の方法。
J. 仕分け戦略を含む液滴仕分け
J1. 特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けるためのシステムであって:
該粒子を含有する流体の流れを送達するための流体送達システム;
該流れを受け取り、該粒子を含有する液滴を形成し、仕分け戦略に従って、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含有する第１の液滴、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第２の液滴および各々が特徴Aを有する１以上の粒子および特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第３の液滴を含む該液滴を異なる集団に仕分けるためのフローサイトメトリー装置;および
フローサイトメトリー装置を制御して、仕分け戦略を変更する、または流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関して該少なくとも１つの液滴集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動するためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする該システム。
J2. 該制御が流体送達システムを制御して、流体が実質的に一定に送達される速度を維持し、かつ制御が仕分け戦略を変更するJ1記載のシステム。
J3. 該制御が仕分け戦略を変更して、液滴集団のうちの１つにおいて、第３の液滴のパーセンテージを変動させるJ2記載のシステム。
J4.該制御が、流体送達システムを制御して、流体が、該少なくとも１つの液滴集団の純度の関数として送達される速度を変動させるJ1記載のシステム。
J5.該純度が少なくとも85%かつ95%以下であるJ4記載のシステム。
J6. 該制御が、流体送達システムを制御して、流体が、該流れにおける特徴A粒子の総量に対する該少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子の量の関数として送達される速度を変動させるJ1記載のシステム。
J7. 該少なくとも１つの液滴集団中の特徴A粒子量が、該流れ中の特徴A粒子の総量の少なくとも約60%を表すように、流体が送達される速度が変動するJ6記載のシステム。
J8.該粒子が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるJ1記載のシステム。
J9. 該混合物における特徴A粒子対特徴B粒子の割合が既知の割合であり、該制御が、粒子のうちのいくつかを、特徴Aまたは特徴Bを有すると分類し、流体送達速度を、分類された粒子の速度の関数として、既知の速度に変動するように操作することが可能なJ1記載のシステム。
J10. 該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、仕分けされた粒子の純度を決定するJ1記載のシステムであって、さらに、所望の純度を示すための該制御へのオペレーターインプットを含み、ここに該制御は、該少なくとも１つの液滴集団の純度が、略、所望の純度に対応するように、割合を変更する該システム。
K.仕分け戦略を含む液滴仕分け方法
K1. 特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体の流れを送達し;
該粒子を含有する液滴を形成し;
仕分け戦略に従って、該液滴を異なる集団に分類し、ここに、該液滴は、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含有する第１の液滴、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第２の液滴および各々が特徴Aを有する１以上の粒子および特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第３の液滴を含み;次いで、
仕分け戦略を変更する、または、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの液滴集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動することを特徴とする該システム。
K2.さらに、流体が送達される速度を、実質的に一定に維持し、仕分け方法を変動させることを特徴とするK1記載の方法。
K3.さらに、液滴集団のうちの１つにおいて、第３の液滴のパーセンテージを変動させるために、仕分け方法を変動させることを特徴とするK2記載の方法。
K4.さらに、流体が送達される速度を、液滴集団のうちの少なくとも１つの純度の関数として変動させることを特徴とするK1記載の方法。
K5.さらに、該純度を85%ないし95%の範囲に維持することを特徴とするK4記載の方法。
K6. さらに、流体が、該流れにおける特徴A粒子の総量に対する該少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子の量の関数として送達される速度を変動させることを特徴とするK1記載の方法。
K7. 該少なくとも１つの液滴集団中の特徴A粒子の量が、該流れ中の特徴A粒子の総量の少なくとも約60%を表すように、流体が送達される速度を変動させるK6記載の方法。
K8.該粒子が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるK1記載の方法。
K9.さらに、該少なくとも１つの液滴集団の純度が所望の純度以上である時、速度を上げ、該少なくとも１つの液滴集団の純度が所望の純度未満である時、速度を下げることを特徴とするK1記載の方法。
L.フィードバックループを有する可変流速液滴仕分け器
L1. 特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含めた粒子の混合物を仕分けるためのシステムであって:
該粒子を含有する流体の流れの送達するための可変速流体送達システム;
該流れを受け取り、該粒子を含有する液滴を形成し、仕分け戦略に従って、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含有する第１の液滴、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第２の液滴および各々が特徴Aを有する１以上の粒子および特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第３の液滴を含む該液滴を異なる集団に仕分けるためのフローサイトメトリー装置;および
フローサイトメトリー装置を制御して、仕分け戦略を変更する、または流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関して該少なくとも１つの液滴集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動するためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする該システム。
L2. 該制御が、流体送達システムを制御して、流体が、該少なくとも１つの液滴集団の純度の関数として送達される速度を変動させるL1記載のシステム。
L3.純度が少なくとも85%かつ95%以下であるL2記載のシステム。
L4. 該制御が、流体送達システムを制御して、流体が、該流れ中の特徴A粒子の総量に対する少なくとも１つの液滴集団中の特徴A粒子の量またはパーセンテージの関数として送達される速度を変動するL1記載のシステム。
L5. 該少なくとも１つの液滴集団中の特徴A粒子の量が、該流れ中の特徴A粒子の総量の少なくとも約60%を表すように、流体が送達される速度を変動するL4記載のシステム。
L6.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するL1記載のシステム。
L7.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるL1記載のシステム。
L8. 該少なくとも１つの液滴集団中の液滴の少なくともいくつかが、同じ液滴中に少なくとも１つの生X細胞および少なくとも１つのY細胞を含有し、該少なくとも１つの液滴集団の該純度が、X/(X+Y)によって測定されるL7記載のシステム。
L9.該制御が、流体送達の速度を変動させて、該純度を85%以上95%未満で維持するL8記載のシステム。
L10.特徴Bが生X細胞ではない細胞の指標であるL7記載のシステム。
L11. 該少なくとも１つの液滴集団中の生X細胞のパーセンテージが、該第１、第２および第３の複数の液滴中の生X細胞の総数の少なくとも60%であるように、該制御が、流体送達の速度を変動するように操作可能であるL7記載のシステム。
L12.該少なくとも１つの液滴集団の純度が95%未満で維持されるL11記載のシステム。
L13.該混合物における特徴A粒子対特徴B粒子の割合が既知の割合であり、該制御が、粒子のうちのいくつかを、特徴Aまたは特徴Bを有すると分類し、流体送達システムを、分類された粒子の速度の関数として、既知の速度に変動するように操作可能であるクレームL1記載のシステム。
L14. 特徴Aを有する粒子が生X精子細胞であり、特徴Bを有する粒子が、生X精子細胞ではない精子細胞であり、該制御が、分類された精子細胞の割合の関数として、流体送達速度を、50%まで変動するように操作可能であるL1記載のシステム。
L15.該少なくとも１つの液滴集団の純度が所望の純度より大きい時に、速度を増加させ、該少なくとも１つの液滴集団の純度が該所望の純度より小さい時に、速度を減少させることを特徴とするL1記載のシステム。
L16.該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、仕分けられた粒子の純度を決定するL1記載のシステムであって、さらに、所望の純度を示すための該制御へのオペレーターインプットを含み、ここに該制御は、該少なくとも１つの液滴集団の純度が、略、所望の純度に対応するように、割合を変更する該システム。
M.可変流速およびフィードバックを用いる液滴仕分け方法
M1. 特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体の流れを送達し;
該粒子を含有する液滴を形成し;
仕分け戦略に従って、該液滴を異なる集団に分類し、ここに、該液滴は、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含有する第１の液滴、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第２の液滴および各々が特徴Aを有する１以上の粒子および特徴Bを有する１以上の粒子を含有する第３の液滴を含み;次いで、
仕分け戦略を変更する、または、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの液滴集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動することを特徴とする該方法。
M2.さらに、流体が送達される速度を、少なくとも１つの液滴集団の純度の関数として変動させることを特徴とするM1記載の方法。
M3.該純度が少なくとも85%かつ95%以下であるM2記載の方法。
M4.さらに、流体が、該流れにおける特徴A粒子の総量に対する該少なくとも１つの液滴集団における特徴A粒子の量の関数として送達される速度を変動させることを特徴とするM1記載の方法。
M5. さらに、該少なくとも１つの液滴集団中の特徴A粒子の量が、該流れ中の特徴A粒子の総量の少なくとも約60%を表すように、流体送達速度を変動することを特徴とするM4記載の方法。
M6.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するM1記載の方法。
M7.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるM1記載の方法。
M8. 該することを特徴つの液滴集団中の少なくともいくつかの該液滴が、同じ液滴中に少なくとも１つの生X細胞および少なくとも１つのY細胞を含有し、該少なくとも１つの液滴集団の該純度がX/(X+Y)によって測定されるM7記載の方法。
M9.さらに、流体送達の速度を変動させて、該純度を85%以上95%未満で維持することを特徴とするM8記載の方法。
M10.特徴Bが生X細胞でない細胞の指標であるM7記載の方法。
M11.さらに、該少なくとも１つの液滴集団中の生X細胞のパーセンテージが、該第１、第２および第３の複数の液滴中の生X細胞の総数の少なくとも60%であるように、流体送達の速度を変動することを特徴とするM7記載の方法。
M12.さらに、該少なくとも１つの液滴集団の純度を95%未満で維持することを特徴とするM11記載の方法。
M13. 該混合物における特徴A粒子対特徴B粒子の割合が既知の割合である方法であって、さらに、流体送達速度を、分類された粒子の速度の関数として、既知の速度に変動することを特徴とするM1記載の方法。
M14. 特徴Aを有する粒子が生X精子細胞であり、特徴Bを有する粒子が生X精子細胞であるM1記載の方法であって、さらに、流体送達速度を、分類された精子細胞の割合の関数として、50%まで変動することを特徴とする該方法。
M15. さらに、該少なくとも１つの液滴集団の純度が所望の純度より大きい時に、速度を増加させ、該少なくとも１つの液滴集団の純度が該所望の純度より小さい時に、速度を減少させることを特徴とするM1記載の方法。
N. 高純度仕分け戦略のための精子仕分けシステム
XおよびY精子細胞を仕分けるためのシステムであって:
XおよびY精子細胞を含有する流体の流れを送達するための可変速流体送達システム;
(1)該流れを受け取り、粒子を含む液滴を形成し、該液滴は、各々が１以上のX精子細胞を含有する第１の液滴、各々が１以上のY精子細胞を含有する第２の液滴、および各々が１以上のX精子細胞および１以上のY精子細胞を含有する第３の複数の液滴を含み、(2)該第１の液滴を、該第２および第３の液滴から仕分け、(3)該第１の液滴を収集して、X精子細胞の少なくとも１つの集団を供し、および(4)少なくとも１つの集団におけるX精子細胞の量を同定するためのフローサイトメトリー装置;および
流体がフローサイトメーター装置に送達される速度を、該第１、第２および第３の液滴におけるX細胞の総数に対する該少なくとも１つの集団における同定されたX精子細胞の量の関数として変動させるためのフローサイトメーター装置から受け取った指示に応答する制御;
を含むことを特徴とする該システム。
N2.該フローサイトメトリー装置が、該少なくとも１つの集団において収集されたX細胞の数を同定するのに操作可能であり、該制御は、流体が、該第１、第２および第３の液滴中のX細胞の総数に対する許容可能な量にて、またはそれ以上にて、該少なくとも１つの集団において収集されるX細胞の量を維持するために、フローサイトメトリー装置に送達される速度を変化させるN1記載のシステム。
N3.該許容される量がX細胞の該総数の少なくとも60%であるN2記載のシステム。
N4.該X細胞が生X細胞であるN3記載のシステム。
N5. 該制御が、該少なくとも１つの集団中のX細胞の量が該許容される量を上回る時、流体送達の速度を増加させ、該少なくとも１つの集団中のX細胞の量が該許容される量を下回る時、流体送達の速度を減少するように操作可能であるN2記載のシステム。
O. 高-純度仕分け戦略を含む精子仕分け方法
O1.XおよびY精子細胞を仕分ける方法であって:
XおよびY精子細胞を含有する流体の流れを、第１の場所に送達し、該流れを、第２の場所にて液滴へと分け、該液滴は、各々が１以上のX精子細胞を含有する第１の液滴、各々が１以上のY精子細胞を含有する第２の液滴、および各々が１以上のX精子細胞および１以上のY精子細胞を含有する第３の複数の液滴を含み;
該第１の液滴を該第２および第３の液滴から仕分け;
該第１の液滴を収集して、X精子細胞の少なくとも１つの集団を供し;
該少なくとも１つの集団において収集されたX精子細胞の量を同定し;次いで
流体が、該第１の場所に送達される速度を、該第１、第２および第３の液滴中のX細胞の総数に対する該少なくとも１つの集団において収集された同定されたX精子細胞の量の関数として変動させることを特徴とする該方法。
O2. さらに、流体が、該第１、第２および第３の液滴中のX細胞の総数に対する許容可能な量にて、またはそれ以上にて、該少なくとも１つの集団において収集されるX細胞の量を維持するために、該第１の場所に送達される速度を変動させることを特徴とするO1記載の方法。
O3. 該許容される量が、X細胞の該総数の少なくとも60%であるO2記載の方法。
O4.該X細胞が生X細胞であるO3記載の方法。
O5.さらに、該少なくとも１つの集団に収集されるX細胞の量またはパーセンテージが、該許容される量を上回る時、流体送達の速度を増加させ、該少なくとも１つの集団中に収集されるX細胞の量またはパーセンテージが、該許容される量を下回る時、流体送達の速度を減少させることを特徴とするO1記載の方法。
P.高回収仕分け戦略のための精子仕分け器
P1. XおよびY精子細胞を仕分けるためのシステムであって:
XおよびY精子細胞を含有する流体の流れを送達するための可変速度流体送達システム;
(1)該流れを受け取り、粒子を含む液滴を形成し、該液滴は、各々が１以上のX精子細胞を含有する第１の液滴、各々が１以上のY精子細胞を含有する第２の液滴、および各々が１以上のX精子細胞および１以上のY精子細胞を含有する第３の複数の液滴を含み、(2)該第１および第３の液滴を、該第２の液滴から仕分け、(3)該第１および第３の液滴を収集して、X精子細胞の少なくとも１つの集団を供し、次いで(4)少なくとも１つの集団において、Y精子細胞の量を同定するためのフローサイトメーター装置;および
流体が、該少なくとも１つの集団において同定されたY精子細胞の量の関数として、フローサイトメーター装置に送達される速度を変動させるフローサイトメーター装置から受け取った指示に応答する制御;
を含むことを特徴とする該システム。
P2.該制御が、所望の純度にて、またはそれ以上にて、該少なくとも１つの集団の純度を維持するために、流体が、フローサイトメーターシステムに送達される速度を変動させるP1記載の方法。
P3.該制御が、該少なくとも１つの集団の純度が該所望の純度より大きい時、流体送達速度を増加し、純度が該所望の純度未満である時、流体送達速度を減少するように操作可能であるP2記載のシステム。
P4.該所望の純度が95%以下であるP2記載のシステム。
P5.該X精子細胞が生細胞であるP2記載のシステム。
Q.高回収仕分け戦略を含む精子仕分け方法
Q1.XおよびY精子細胞を仕分ける方法であって:
XおよびY精子細胞を含有する流体の流れを、第１の場所に送達し、該流れを、第２の場所にて液滴へと分け、該液滴は、各々が１以上のX精子細胞を含有する第１の液滴、各々が１以上のY精子細胞を含有する第２の液滴、および各々が１以上のX精子細胞および１以上のY精子細胞を含有する第３の複数の液滴を含み、;
該第１および第３の液滴を、該第２の液滴から仕分け;
該第１および第３の液滴を収集して、X精子細胞の少なくとも１つの集団を供し;
該少なくとも１つの集団において収集されたY精子細胞の量を同定し;次いで
該少なくとも１つの集団において収集された同定されたY精子細胞の量の関数として、流体を該第１の場所に送達する速度を変動させることを特徴とする該方法。
Q2. さらに、流体が送達される速度を変動させて、X細胞に対する該少なくとも１つの集団の純度を、所望の純度にてまたはそれ以上で維持することを特徴とするQ1記載の方法。
Q3.さらに、該少なくとも１つの集団の純度が該所望の純度より大きい時、流体送達速度を増加させ、純度が該所望の純度未満である時、流体送達速度を減少させることを特徴とするQ2記載のシステム。
Q4.該所望の純度が95%以下であるQ2記載の方法。
Q5.該X精子細胞が生細胞であるQ2記載の方法。
Q6.フローサイトメトリーを用いて、XおよびY精子細胞を仕分ける方法であって
XおよびY精子細胞を含有する流体の流れを、第１の場所に送達し、該流れを、第２の場所にて液滴へと分け、該液滴は、各々が１以上のX精子細胞を含有する第１の液滴、各々が１以上のY精子細胞を含有する第２の液滴、および各々が１以上のX精子細胞および１以上のY精子細胞を含有する第３の複数の液滴を含み;
該第１の液滴および該第３の液滴を第２の液滴から仕分け;
該第１の液滴および第３の液滴を収集して、X精子細胞の少なくとも１つの集団を供する;
ことを特徴とする該方法。
Q7.該X精子細胞が生細胞であり、死X細胞ではないQ6記載の方法。
Q8.フローサイトメトリーを用いてXおよびY精子細胞を仕分ける方法であって:
XおよびY精子細胞を含有する流体の流れを送達し、該流れを液滴へと壊し;
液滴に壊れる前に、流体の流れを問い合わせて、どの精子細胞がどの液滴中に存在するかを同定し;
X精子細胞を含有する液滴を、X精子細胞を含有しない液滴から仕分け;次いで
少なくとも１つのX精子細胞および少なくとも１つのY精子細胞を含有する液滴を含むX精子細胞を含有する該液滴を収集することを特徴とする該方法。
Q9.該X精子細胞が生X細胞であり、死X細胞ではないQ8記載の方法。
R.仕分け戦略を有する光損傷仕分け
R1.特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けるためのフローサイトメトリーシステムであって、該粒子を含有する流体を送達するための流体送達システム、それを流れへと形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類する該流体を受け取るためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供する仕分けシステムを含む該システムにおいて、
仕分けシステムを制御して、その仕分け戦略を変更するか、あるいは流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団において除去されない特徴A粒子または除去されない特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動するためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする改良。
R2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するR1記載のシステム。
R3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるR1記載のシステム。
R4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であるR3記載のシステム。
R5.該制御が、該少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させるR1記載のシステム。
R6.該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、少なくとも１つの集団の純度を決定するU1記載のシステムであって、さらに、所望の純度を示すための制御にオペレーターインプットを含み、ここに該制御が流体送達の速度を変動させて、所望の純度を得る該システム。
R7.該流れが、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成されるR1記載のシステム。
R8.該レーザーが第２の粒子組のみを除去するR7記載のシステム。
R9.該制御が該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満で維持するR8記載のシステム。
R10.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、該レーザーが、流れ中の第２の粒子組および第３の粒子組を除去するように操作可能であるR7記載のシステム。
R11.該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量より大きいとき、流体送達の速度を増加させ、制御が、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、該許容される量より小さい時、流体送達の速度を減少させるR10記載のシステム。
R12.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量を決定するR10記載のシステムであって、さらに、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量を示すための制御に、オペレーターインプットを含み、ここに制御が、流体送達速度を変動させて、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量を得る該システム。
S.仕分け戦略を含む光損傷仕分け方法
S1.フローサイトメトリーシステムを用いて、特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体を送達し;
流体を流れへと形成し、フローサイトメトリーを用いて、該特徴に従って、流れ中の粒子を分類し;
流れ中の粒子を、該分類に従って、および仕分け方法に従って、選択された粒子を除去することによって仕分け、それにより、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供し;次いで
仕分け方法を変動させる、あるいは流体が送達される速度を、以下:(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかの関する該少なくとも１つの集団の純度; および(2)該流れ中の特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子または除去されていない特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として変動させることを特徴とする該方法。
S2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するS1記載の方法。
S3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるS1記載の方法。
S4.さらに、該少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、該純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させることを特徴とするS1記載の方法。
S5.さらに、該流体を、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成することを特徴とするS1記載の方法。
S6.さらに、第１および第３の粒子組ではなく、第２の粒子組を除去することを特徴とするS5記載の方法。
S7.さらに、該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満にて維持することを特徴とするS6記載の方法。
S8.さらに、第１の粒子組ではなく、第２および第３の粒子組を除去することを特徴とするS5記載の方法。
S9.さらに、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量より大きい時、流体送達の速度を増加させ、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が該許容される量未満である時、流体送達の速度を減少させることを特徴とするS8記載の方法。
T.可変流速およびフィードバックを有する光損傷仕分け器
T1.特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けるためのフローサイトメトリーシステムであって、該粒子を含有する流体を送達するための流体送達システム、それを流れへと形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類する該流体を受け取るためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供する仕分けシステムを含む該システムにおいて、
仕分けシステムを制御して、その仕分け戦略を変更するか、あるいは流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団において除去されない特徴A粒子または除去されない特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動させるためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする改良。
T2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するT1記載のシステム。
T3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるT2記載のシステム
T4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、該レーザーが第２の粒子組のみを除去するT3記載のシステム。
T5.さらに、該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満にて維持することを特徴とするT4記載のシステム。
T6.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、該レーザーが第２および第３の粒子組を除去するT2記載のシステム。
T7.制御が、少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時、流体送達の速度を増加させ、純度が所望の純度より小さい時、流体送達の速度を減少させるT1記載のシステム。
T8.該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、少なくとも１つの集団の純度を決定するT1記載のシステムであって、さらに、所望の純度を示すための制御にオペレーターインプットを含み、ここに該制御が流体送達の速度を変動させて、所望の純度を得る該システム。
T9.該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量より大きい時に、該制御が流体送達の速度を増加させ、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量より小さい時に、該制御が流体送達の速度を減少させるT8記載のシステム。
T10.該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、少なくとも１つの集団の純度を決定するT8記載のシステムであって、さらに、所望の純度を示すための制御にオペレーターインプットを含み、ここに該制御が流体送達の速度を変動させて、所望の純度を得る該システム。
T11.該流れが、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成されるT1記載のシステム。
T12.T特徴Aが生X精子細胞(X)の指標であり、特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、レーザーが第１の粒子組でなく、第２の粒子組および第３の粒子組を除去し、制御が、流体がフローサイトメーター装置に送達される速度を、少なくとも１つの集団中の生X精子細胞の数の関数として変動させるT11記載のシステム。
T13.特徴Aが生X精子細胞(X)の指標であり、特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、レーザーが、第１および第３の粒子組ではなく第２の粒子組を除去し、制御が、流体がフローサイトメーターシステムに送達される速度を、該少なくとも１つの集団中の〜X精子細胞の数の関数として変動させるT11記載のシステム。
U.可変流速仕分け戦略を含む光損傷仕分け方法
U1.フローサイトメトリーシステムを用いて特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体を送達し;
流体を流れへと形成し、フローサイトメトリーを使用して、該特徴に従って流れにおける粒子を分類し;
該分類およびそれによる仕分け戦略に従って、流れにおける粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供し;次いで
仕分け戦略を変更し、または流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における除去されていない特徴A粒子または除去されていない特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動させることを特徴とする該方法。
U2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するU1記載の方法。
U3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるU2記載の方法。
U4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であるおよび該レーザーが、第２の粒子組を除去するU3記載の方法。
U5.さらに、該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満にて維持することを特徴とするU4記載の方法。
U6.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、該レーザーが第２および第３の粒子組を除去するU2記載の方法。
U7.該制御が、少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、該純度が該所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させるU1記載のシステム。
U8.該制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、少なくとも１つの集団の純度を決定するU1記載のシステムであって、さらに、所望の純度を示すための制御にオペレーターインプットを含み、ここに該制御が流体送達の速度を変動させて、所望の純度を得る該システム。
U9.該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量より大きい時に、該制御が流体送達の速度を増加させ、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量より小さい時に、該制御が流体送達の速度を減少させるU8記載のシステム。
U10.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の総数を決定するU8記載のシステムであって、さらに、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の許容される量を示すための制御に、オペレーターインプットを含み、ここに、制御は、少なくとも１つの集団中の特徴A粒子の量が、該許容される量またはパーセンテージを得るように、速度を変動させる該システム。
U11.該流れが、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成されるU1記載のシステム。
U12.T特徴Aが生X精子細胞(X)の指標であり、特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、レーザーが第１の粒子組でなく、第２の粒子組および第３の粒子組を除去し、制御が、流体がフローサイトメーター装置に送達される速度を、少なくとも１つの集団中の生X精子細胞の数の関数として変動させるU11記載のシステム。
U13.特徴Aが生X精子細胞(X)の指標であり、特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、レーザーが第１の粒子組でなく、第２の粒子組および第３の粒子組を除去し、制御が、流体がフローサイトメーター装置に送達される速度を、少なくとも１つの集団中の生X精子細胞の数の関数として変動させるU11記載のシステム。
V.仕分け戦略を含む流体スイッチ粒子仕分け器
V1.特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けるためのフローサイトメトリーシステムであって、該粒子を含有する流体を送達するための流体送達システム、それを流れへと形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類する該流体を受け取るためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供する仕分けシステムを含む該システムにおいて、
仕分けシステムを制御して、その仕分け戦略を変更するか、あるいは流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動させるためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする改良。
V2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するV1記載のシステム。
V3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるV1記載のシステム。
V4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であるV3記載のシステム。
V5.該制御が、該少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させるV1記載のシステム。
V6.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団の純度を決定し、該システムは、さらに、所望の純度を示すための該制御へのオペレーターインプットを含み、ここに該制御は、純度が所望の純度に対応するように、流体送達の速度を変動させるV1記載のシステム。
V7.該流れが、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成されるV1記載のシステム。
V8.該レーザーが第２の粒子組のみを除去するV7記載のシステム。
V9.該制御が該少なくとも１つの集団の純度を、85%以上95%未満にて維持するV8記載のシステム。
V10.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、該レーザーが、流れ中の第２の粒子組および第３の粒子組を除去するように操作可能であるV7記載のシステム。
V11.制御が、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量より大きい時、流体送達の速度を増加させ、制御が、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、該許容される量より小さい時、流体送達の速度を減少させるV10記載のシステム。
V12.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量を決定するV10記載のシステムであって、さらに、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量を示すための制御に、オペレーターインプットを含み、ここに制御が、流体送達速度を変動させて、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量を得る該システム。
W.仕分け戦略を含む流体スイッチ仕分けの方法
W1.フローサイトメトリーシステムを用いて特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体を送達し;
流体を流れへと形成し、フローサイトメトリーを使用して、該特徴に従って流れにおける粒子を分類し;
該分類およびそれによる仕分け戦略に従って、流れにおける粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供し;次いで
仕分け戦略を変更し、または流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動させることを特徴とする該方法。
W2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するW1記載の方法。
W3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるW1記載の方法。
W4.さらに、該少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、該純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させることを特徴とするW1記載の方法。
W5.さらに、該流体を、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成することを特徴とするW1記載の方法。
W6.さらに、第１および第３の粒子組ではなく、第２の粒子組を除去することを特徴とするW5記載の方法。
W7.さらに、該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満にて維持することを特徴とするW6記載の方法。
W8.さらに、第１の粒子組ではなく、第２および第３の粒子組を除去することを特徴とするW5記載の方法。
W9.該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量より大きいとき、流体送達の速度を増加させ、制御が、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、該許容される量より小さい時、流体送達の速度を減少させるW8記載のシステム。
X.可変流速仕分け戦略を含む流体スイッチ仕分け器
X1.特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けるためのフローサイトメトリーシステムであって、該粒子を含有する流体を送達するための流体送達システム、それを流れへと形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類する該流体を受け取るためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供する仕分けシステムを含む該システムにおいて、仕分けシステムを制御して、その仕分け戦略を変更するか、あるいは流体送達システムを制御して、流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動させるためのフローサイトメトリー装置から受け取った情報に応答する制御を含むことを特徴とする改良。
X2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するX1記載のシステム。
X3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるX1記載のシステム。
X4.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であるX3記載のシステム。
X5.該制御が、該少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させるX1記載のシステム。
X6.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団の純度を決定し、該システムは、さらに、所望の純度を示すための該制御へのオペレーターインプットを含み、ここに該制御は流体送達の速度を変動させて、所望の純度を得るX1記載のシステム。
X7.該流れが、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成されるX1記載のシステム。
X8.該レーザーが第２の粒子組のみを除去するX7記載のシステム。
X9.該制御が該少なくとも１つの集団の純度を、85%以上95%未満にて維持するX8記載のシステム。
X10.特徴Bが生X細胞(〜X)以外の指標であり、該レーザーが、流れ中の第２の粒子組および第３の粒子組を除去するように操作可能であるX7記載のシステム。
X11.該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量より大きいとき、流体送達の速度を増加させ、制御が、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、該許容される量より小さい時、流体送達の速度を減少させるX10記載のシステム。
X12.制御が、フローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づき、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量を決定するX10記載のシステムであって、さらに、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量を示すための制御に、オペレーターインプットを含み、ここに制御が、流体送達速度を変動させて、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量を得る該システム。
Y.可変流速およびフィードバックを含む流体スイッチ仕分け方法
Y1.フローサイトメトリーシステムを用いて特徴Aを有する粒子および特徴Bを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分ける方法であって:
該粒子を含有する流体を送達し;
流体を流れへと形成し、フローサイトメトリーを使用して、該特徴に従って流れにおける粒子を分類し;
該分類に従って、流れ中の選択された粒子を転換することによって、流れ中の粒子を仕分け、それにより、所望の粒子を含有する少なくとも１つの集団を供し;次いで
仕分け戦略を変更し、または流体が、以下の(1)特徴A粒子または特徴B粒子のいずれかに関する該少なくとも１つの集団の純度;および(2)該流れにおける特徴A粒子または特徴B粒子の総量に対する該少なくとも１つの集団における特徴A粒子または特徴B粒子の量のうちの少なくとも１つの関数として送達される速度を変動させることを特徴とする該方法。
Y2.粒子が細胞であり、特徴AおよびBが細胞の物理的特徴に関するY1記載の方法。
Y3.該細胞が精子細胞であり、特徴Aが生X精子細胞の指標であるY1記載の方法。
Y4.さらに、該少なくとも１つの集団の純度が所望の純度より大きい時に、流体送達の速度を増加させ、該純度が所望の純度より小さい時に、流体送達の速度を減少させることを特徴とするY1記載の方法。
Y5.さらに、該流体を、各々が特徴Aを有する１以上の粒子を含む第１の粒子組、各々が特徴Bを有する１以上の粒子を含む第２の粒子組、および各々が、少なくとも１つが特徴Aを有し、少なくとも１つが特徴Bを有する２以上の近接して間隔を設けた粒子を含む第３の粒子組を含めた、連続した組の粒子を含む一連の一般的に次々に続く粒子を含有するように形成することを特徴とするY1記載の方法
Y6.さらに、第１および第３の粒子組ではなく、第２の粒子組を除去することを特徴とするY5記載の方法。
Y7.さらに、該少なくとも１つの集団の純度を85%以上95%未満にて維持することを特徴とするY6記載の方法。
Y8. さらに、第１の粒子組ではなく、第２および第３の粒子組を除去することを特徴とするY5記載の方法。
Y9.さらに、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が、少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の許容される量より大きい時、流体送達の速度を増加させ、該少なくとも１つの集団中の除去されていない特徴A粒子の量が該許容される量未満である時、流体送達の速度を減少させることを特徴とするY8記載の方法。
Z.[保留]
ＡＡ．ＰＭＴアウトプットシグナル用のＡ／Ｄ変換器ならびにＤＳＰ分析および分類
ＡＡ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは、該粒子含む流体を送達するための流体送達システム、該流体を受容し、それを流れに形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置、および、該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供する仕分けシステムを含み、改良点が：
該フローサイトメトリー装置からの時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、および、該事変アナログアウトプットに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供するＡ／Ｄ変換器、ここに該時変アナログアウトプットおよび対応するデジタル情報は特徴Ａまたは特徴Ｂを示し；
デジタル情報を分析および分類し、および、分析および分類したデジタル情報の関数として該仕分けシステムに仕分けシグナルを提供するデジタルシグナルプロセッサーを含む該フローサイトメトリーシステム。
ＡＡ１Ａ． 時変アナログアウトプットが一連の波形パルスを含み、その各々が粒子の特徴の表示であって、ここにデジタルシグナルプロセッサーが波形パルスに対応するデジタル情報の部分を検出し、および、該検出した部分を分類し、および、デジタルシグナルプロセッサーが該検出および分類した部分の関数として該仕分けシグナルを提供するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ１Ｂ． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるための、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２． 粒子が細胞であって、特徴ＡおよびＢが細胞の物理学的特徴に関するＡＡ１Ｂ記載のシステム。
ＡＡ３． 粒子が精子細胞であって、特徴Ａが生Ｘ精子細胞を示すＡＡ１Ｂ記載のシステム。
ＡＡ４． 特徴Ｂが生Ｘ細胞（〜Ｘ）以外のものを示すＡＡ３記載のシステム。
ＡＡ５． さらに、該少なくとも１の集団の純度を８５％を超えるが９５％未満に維持することを含むＡＡ４記載のシステム。
ＡＡ６． 制御が該純度が所望の純度よりも大きい場合には流体送達の速度を上昇し、および、該純度が該所望の純度よりも小さい場合には流体送達の速度を低下するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ７． 制御がフローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づいて該少なくとも１の集団の純度を決定し、該システムがさらに所望の純度を示すためにオペレータが制御に入力することを含み、および、制御が純度が所望の純度に対応するように流体送達の速度を変化するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ８． 制御が該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の量が少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の許容し得る量よりも多い場合には流体送達の速度を上昇し、および、制御が該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の量が該許容し得る量よりも小さい場合には流体送達の速度を低下するＡＡ７記載のシステム。
ＡＡ９． 制御がフローサイトメトリー装置からのアウトプットシグナルに基づいて該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の量を決定し、該システムがさらに該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の許容し得る量の特徴Ａ粒子を示すために制御に入力するオペレータを含み、および、制御が該少なくとも１の集団中の該許容し得る量を得るために流体送達速度を変化するＡＡ８記載のシステム。
ＡＡ１０． 該流れが、各々特徴Ａを有する１またはそれを超える粒子を含む第１の粒子セット、各々特徴Ｂを有する１またはそれを超える粒子を含む第２の粒子セット、および、各々２またはそれを超える近接して離れた粒子を含む第３の粒子セット（そのうちの少なくとも１は特徴Ａを有し、そのうちの少なくとも１は特徴Ｂを有する）を含む第３の粒子セットを含む、連続する一連の粒子を含む直列中で一般に逐次に続く粒子を含むために形成されるＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ１１． 該仕分けシステムが、該第１の粒子セットが該少なくとも１の集団中の収集のために選択され、および、該第２および第３の粒子セットが該少なくとも１の集団中の収集のために選択されない仕分け戦略を使用するのに作動可能であるＡＡ１０記載のシステム。
ＡＡ１２． 該仕分けシステムが、該第１および第３の粒子セットが該少なくとも１の集団中の収集のために選択され、および、該第２の粒子セットが該少なくとも１の集団中の収集のために選択されない仕分け戦略を使用するのに作動可能であるＡＡ１０記載のシステム。
ＡＡ１３． 該仕分けシステムが、液滴仕分けシステムを含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ１４． 該仕分けシステムが、光損傷仕分けシステムを含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ１５． 該仕分けシステムが、流体スイッチング仕分けシステムを含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ１６． 該デジタルプロセッサーが、デジタル情報に対応するパルスを検出する命令、検出したパルス中の特徴を抽出する命令、および、その抽出した特徴の関数として検出したパルスを識別する命令を含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ１７． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴と特徴Ｂを表わす抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定する命令を含むＡＡ１６記載のシステム。
ＡＡ１８． 以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量のうちの少なくとも１の関数として、該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴に関して、および、特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整するＡＡ１７記載のシステム。
ＡＡ１９． 該デジタルシグナルプロセッサーが、連続流れにデジタル情報をアセンブリングするためのデータ管理プロセッサーを含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２０． 該デジタルシグナルプロセッサーが、デジタル情報によって表わされる波形パルスを検出するためのパルス検出プロセッサーを含み、および、該デジタルシグナルプロセッサーが、検出した波形パルスの関数としてデジタル情報を分類するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２１． さらに、変換器の連続サンプリング速度の２分の１以下の周波数でアナログアウトプットを濾過するためのフィルタを含み、該変換器が濾過したアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換し、および、該デジタルシグナルプロセッサーが識別境界の関数としてデジタル情報を分類するＡＡ２０記載のシステム。
ＡＡ２２． 連続サンプリング速度が、約１０５ＭＨｚまたはそれよりも高いＡＡ２１記載のシステム。
ＡＡ２３． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴と特徴Ｂを表わす抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定するための特徴抽出および識別プロセッサーを含み、および、特徴抽出および識別プロセッサーは該デジタル情報によって表される特徴を抽出し、決定境界の関数として特徴を分類するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２４． 該デジタルシグナルプロセッサーが、該仕分けシステムに仕分けシグナルを提供するための分類に応答する仕分けプロセッサーを含むＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２５． 該プロセッサーが、特徴Ａを有するまたは特徴Ｂを有する分類した粒子の数を計数しない（innumerate）ＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２６． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数を実質的にプリセット量以下に低下する関数として、または、特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数を実質的にプリセット量以下に最小化する関数として、デジタル情報を分類するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２７． プリセット量が約１.５％以下であるＡＡ２６記載のシステム。
ＡＡ２７ａ． プリセット量が約１.３％以下であるＡＡ２６記載のシステム。
ＡＡ２８． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを有する粒子の集団および特徴Ｂを有する粒子の集団が特徴Ａを有する粒子の第１のモデル集団、特徴Ｂを有する粒子の第２のモデル集団および非整列粒子の第３のモデル集団を含む３の集団のコンピューターモデルに対応するように、デジタル情報を分類するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ２９． 第３のモデル集団が非整列粒子の２の集団を含み、該モデルが２の集団について集団統計を見積もるＡ２８記載のシステム。
ＡＡ３０． 該デジタルシグナルプロセッサーがデジタル情報によって表される波形パルスを検出するためのパルス検出プロセッサーを含み、該デジタルシグナルプロセッサーが特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてまたは特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてデジタル情報を分類するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ３０ａ． さらに、変換器の連続サンプリング速度の二分の一以下の周波数でアナログアウトプットを濾過するためのフィルタを含み、変換器が濾過したアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換し、および、該デジタルシグナルプロセッサーが特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてまたは特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてデジタル情報を分類するＡＡ３０記載のシステム。
ＡＡ３０ｂ． 該デジタルシグナルプロセッサーが特徴Ａを表す抽出した特徴と特徴Ｂを表す抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定するための特徴抽出および識別プロセッサーを含み、および、特徴抽出および識別プロセッサーが該デジタル情報によって表される特徴を抽出し、および、特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてまたは特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数の関数として特徴を分類するＡＡ１記載のシステム。
ＡＡ３１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためにフローサイトメトリーシステムを用いる方法であって：
該粒子を含む流体を送達し；
流体を流れに形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って流れ中の粒子を検出し；
流れ中の粒子を仕分け戦略に従って仕分けし、それによって、所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供し；
該フローサイトメトリーからのアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換し、ここにアナログアウトプットが特徴Ａまたは特徴Ｂを示し；および
デジタル情報を分析および分類し、および、分析および分類したデジタル情報の関数として粒子を仕分けすることを含む該方法。
ＡＡ３１． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する該少なくとも１の集団の純度；および、（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分け戦略を変化しまたは流体が送達される速度を変化させることを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ３２． 粒子が細胞であって、特徴ＡおよびＢが細胞の物理学的特徴に関するＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ３３． 該粒子が精子細胞であって、特徴Ａが生Ｘ精子細胞を示すＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ３４． 特徴Ｂが生Ｘ細胞（〜Ｘ）以外を示すＡＡ３３記載の方法。
ＡＡ３５． さらに、該純度を８５％を超えるが９５％未満に維持するＡＡ３３記載の方法。
ＡＡ３６． さらに、該純度が所望の純度よりも大きい場合に流体送達の速度を上昇し、および、該純度が所望の純度よりも小さい場合に流体送達の速度を低下することを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ３７． さらに、該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の量が少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の許容し得る量よりも大きい場合に流体送達の速度を上昇し、該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子の量が該許容し得る量よりも少ない場合に流体送達の速度を低下することを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ３８． さらに、各々特徴Ａを有する１またはそれを超える粒子を含む第１の粒子セット、各々特徴Ｂを有する１またはそれを超える粒子を含む第２の粒子セット、および各々２またはそれを超える近接して離れた粒子を含み、その少なくとも１が特徴Ａを有し、その少なくとも１が特徴Ｂを有する第３の粒子セットを含む、粒子の連続するセットを含む直列において一般的に逐次に該粒子を含むように流れを形成することを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ３９． さらに、該少なくとも１の集団中の収集のために第１の粒子セットのみを選択する仕分け戦略に従って該粒子を仕分けすることを含むＡＡ３８記載の方法。
ＡＡ４０． さらに、第少なくとも１の集団中の収集のために第１および第３の粒子セットを選択する仕分け戦略に従って該粒子を仕分けすることを含むＡＡ３８記載の方法。
ＡＡ４１． 該仕分けが、液滴仕分けプロセスを用いることを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ４２． 該仕分けが、光損傷仕分けプロセスを用いることを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ４３． 該仕分けが、流体スイッチング仕分けプロセスを用いることを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ４４． さらに、デジタル情報により表される波形パルスを検出し、デジタル情報から波形パルスの特徴を抽出し、ついで、それらの抽出した特徴の関数として検出した波形パルスを識別することを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ４５． さらに、特徴Ａを表す抽出した特徴と特徴Ｂを表す抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定することを含むＡＡ４４記載の方法。
ＡＡ４６． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して該少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、特徴Ａを表す抽出した特徴に関しておよび特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整することを含むＡＡ４５記載の方法。
ＡＡ４７． 該変換がアナログアウトプットを同期してサンプリングすることを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ４８． デジタル情報を分類することが、特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数を実質的にプリセット量以下に最小限化する関数として、または、特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数を実質的にプリセット量以下に最小限化する関数として、デジタル情報を分類することを含むＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ４９． プリセット量が約１.５％以下であるＡＡ４８記載の方法。
ＡＡ５０． デジタル情報を分類することが、特徴Ａを有する粒子の集団および特徴Ｂを有する粒子の集団が特徴Ａを有する粒子の第１モデル集団、特徴Ｂを有する粒子の第２モデル集団、および、非整列粒子の第３のモデル集団を含む３の集団のコンピューターモデルに対応するようにデジタル情報を分類することを含み、該モデルが第１、第２および第３のモデル集団に対して集団統計を概算するＡＡ３１記載の方法。
ＡＡ５１． デジタル情報を分類することが、特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてまたは特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数の関数として、デジタル情報を分類することを含むＡＡ３１記載の方法。
ＢＢ．初期検出パラメーターの決定
ＢＢ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは、該粒子を含む流体を送達するための流体送達システム、該流体を受容し、それを流れに形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置、および、該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供する仕分けシステムを含み、改良点が：
該フローサイトメトリー装置からの時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、該時変アナログアウトプットに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供し、ここに該時変アナログアウトプットおよび対応するデジタル情報が特徴Ａまたは特徴Ｂを示すＡ／Ｄ変換器；
該デジタル情報から該時変アナログアウトプットのバックグラウンド特徴を決定するデジタルシグナルプロセッサー；
該決定したバックグラウンド特徴の関数として該デジタル情報によって表される波形パルスを検出すること；および
検出した波形パルスの関数として該仕分けシステムに仕分けシグナルを提供すること、を含む該フローサイトメトリーシステム。
ＢＢ２． 該デジタルシグナルプロセッサーが、バックグラウンド特徴を規定するためのパルス検出閾値を決定する反復手順を用いるＢＢ１記載のシステムであって、該反復手順が：
デジタル情報からのバックグラウンド統計概算値を計算し；
特徴Ａまたは特徴Ｂを示すパルスを同定するために、計算した概算値を用いてパルス検出論理を該デジタル情報にあてはめ；
同定したパルスに対応するデジタル情報を用いることなく概算値を再計算し；ついで
バックグラウンド統計概算値収束または反復の固定最大数が生じるまで前記手順を反復する
ことを含む該システム。
ＢＢ３． 該デジタルシグナルプロセッサーがデジタル情報によって表される波形パルスを検出する命令、検出したパルス中の特徴を抽出する命令、およびその抽出した特徴の関数として検出したパルスを識別する命令を含むＢＢ１記載のシステム。
ＢＢ４． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴と特徴Ｂを表わす抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定する命令を含むＢＢ３記載のシステム。
ＢＢ５． 以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する該少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴に関して、および、特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整するＢＢ４記載のシステム。
ＢＢ６． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して少なくとも１の集団の純度；および、（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるか、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＢＢ１記載のシステム。
ＢＢ７． 該デジタルシグナルプロセッサーがデジタル情報によって表わされる波形パルスを検出するためのパルス検出プロセッサーを含み、および、該デジタルシグナルプロセッサーが検出した波形パルスの関数としてデジタル情報を分類するＢ１記載のシステム。
ＢＢ８． さらに、変換器のサンプリング速度の１／２以下の周波数でアナログアウトプットを濾過するフィルタを含み、および、変換器が濾過したアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換するＢＢ７記載のシステム。
ＣＣ．初期識別パラメーターの生成
ＣＣ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは、該粒子を含む流体を送達するための流体送達システム、該流体を受容し、それを流れに形成し、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置、および、該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供する仕分けシステムを含み、改良点が：
該フローサイトメトリー装置からの時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、該時変アナログアウトプットに対応する対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供し、ここに該時変アナログアウトプットおよび対応するデジタル情報が特徴Ａまたは特徴Ｂを示すＡ／Ｄ変換器；および
デジタル情報から初期識別パラメーターを生成し、初期識別パラメーターの関数としてデジタル情報を識別し、および、識別したデジタル情報の関数として該仕分けシステムに仕分けシグナルを提供するデジタルシグナルプロセッサー
を含む該フローサイトメトリーシステム。
ＣＣ２． デジタルシグナルプロセッサーが、以下のアルゴリズム：ｋ−Ｍｅａａｎｓ、Ｆｕｚｚｙ ｋ−Ｍｅａｎｓおよび凝縮型階層、のうちの少なくとも１を用いて初期識別パラメーターを生成するＣＣ１記載のシステム。
ＣＣ３． 該デジタルシグナルプロセッサーが、デジタル情報によって表される波形パルスを検出する命令、検出した波形パルス中の特徴を抽出する命令、および、その抽出した特徴の関数として検出した波形パルスを識別する命令を含むＣＣ１記載のシステム。
ＣＣ４． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴と特徴Ｂを表わす抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定する命令を含むＣＣ３記載のシステム。
ＣＣ５． 以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する該少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴に関して、および、特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整するＣＣ４記載のシステム。
ＣＣ６． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して該少なくとも１の集団の純度、および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるか、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＣＣ１記載のシステム。
ＤＤ．分類するための波形パルスの同調サンプリング
ＤＤ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは：
該粒子を含む流体を送達するための流体送達システム、および、該流体を受容し、それを流れに形成し、および、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置；
該フローサイトメトリー装置からの一連の波形パルスを含む該時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、および、該波形パルスに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供するＡ／Ｄ変換器、ここに該波形パルスおよび対応するデジタル情報は特徴Ａまたは特徴Ｂを示し；および
デジタル情報を分析し、それに対応する分析したデジタル情報の関数として粒子を分類するデジタルシグナルプロセッサー
を含む該フローサイトメトリーシステム。
ＤＤ２． 該デジタルプロセッサーが波形パルスを規定するために検出閾値を用い、および、該検出閾値がバックグラウンド平均概算値および最新のパルスで終了する試料の動くウインドウ内で計算したデジタル情報の標準偏差の関数であるＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ３． 該デジタル制御が統計変則検出分析を用い、および、デジタル情報のバックグラウンド特徴からのデジタル情報統計変則をデジタルパルスの部分と考えるＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ４． 該デジタルシグナルプロセッサーが、デジタル情報に対応するパルスを検出する命令、検出したパルス中の特徴を抽出する命令、およびそれらの抽出した特徴の関数として検出したパルスを識別する命令を含むＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ５． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表す抽出した特徴と特徴Ｂを表す抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定する命令を含むＤＤ４記載のシステム。
ＤＤ６． 以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表す抽出した特徴に関しておよび特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整するＤＤ５記載のシステム。
ＤＤ７． さらに、変換器のサンプリング速度の２分の１以下の周波数でアナログアウトプットを濾過するためのフィルタを含み、該変換器が濾過したアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換するＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ８． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して少なくとも１の集団の純度；および、（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるか、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ９． プロセッサーが、特徴Ａを有するかまたは特徴Ｂを有する分類した粒子の数を計数しないＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ１０． さらに、粒子を照らして対応する波形パルスを生成するための同期サンプリングと同期したパルス化照明装置を含むＤＤ１記載のシステム。
ＤＤ１１． 該デジタルプロセッサーが、デジタル情報によって表される波形パルスを検出するためのパルス検出プロセッサーを含み、ここに該デジタルシグナルプロセッサーが特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてまたは特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてデジタル情報を分類するＤＤ１０記載のシステム。
ＥＥ．特徴抽出
ＥＥ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは、該粒子を含む流体を送達するための流体送達システム、該流体を受容し、それを流れに形成し、および、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供する仕分けシステムを含み、改良点が；
該フローサイトメトリー装置からの時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、および、該時変アナログアウトプットに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供し、ここに該時変アナログアウトプットおよび対応するデジタル情報が特徴Ａおよび特徴Ｂを示すＡ／Ｄ変換器；
デジタル情報から特徴を抽出し、抽出した特徴の関数として該仕分けシステムに仕分けシグナルを提供するデジタルシグナルプロセッサー
を含む該フローサイトメトリーシステム。
ＥＥ２． 抽出した特徴が、１またはそれを超える以下の特徴：パルス面積、パルスピーク、パルス内側面積、パルス幅、パルスガウシアニティー、パルス遅延ピークまたはパルス傾斜に対応するＥＥ１記載の装置。
ＥＥ３． 抽出した特徴が、パルスの誘導体の近似化またはパルスの平均ピーク高に対するパルスの点におけるパルスの傾斜を含むＥＥ２記載の装置。
ＥＥ４． 該パルスに沿った点が、特徴Ａを有する粒子によって生成されたパルスの第１の誘導体と特徴Ｂを有する粒子によって生成されたパルスの第１の誘導体との間に差異が存在する点に対応するＥＥ３記載の装置。
ＥＥ５． 時変アナログアウトプットが、粒子からの蛍光放射パルスに対応し、
および、該パルスに沿った点が特徴Ａを有する粒子によって生成されたパルスの第１の誘導体および特徴Ｂを有する粒子によって生成されたパルスの第１の誘導体との間の差異が最大またはほぼ最大になる点に対応するＥＥ３記載の装置。
ＥＥ６． 時変アナログアウトプットが粒子からの蛍光放射パルスに対応し、および、該パルスに沿った点が蛍光放射パルスのピーク高の関数であるＥＥ３記載の装置。
ＥＥ７． 該デジタルシグナルプロセッサーが、デジタル情報によって表わされる波形パルスを検出する命令、検出した波形パルス中の特徴を抽出する命令、およびその抽出した特徴の関数として検出した波形パルスを識別する命令を含むＥＥ１記載の装置。
ＥＥ８． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴と特徴Ｂを表わす抽出した特徴との間を識別する決定境界を規定する命令を含むＥＥ７の装置。
ＥＥ９． 以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して該少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表す抽出した特徴に関しておよび特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整するＥＥ８記載の装置。
ＥＥ１０． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する該少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるか、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＥＥ１記載の装置。
ＥＥ１１． 該デジタルプロセッサーが、デジタル情報によって表される波形パルスを検出し、および、検出した波形パルスを分類するためのパルス検出プロセッサーを含むＥＥ１記載の装置。
ＥＥ１２． さらに、変換器のサンプリング速度の二分の一以下の周波数でアナロアウトプットを濾過するためのフィルタを含み、変換器が濾過したアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換するＥＥ１１記載の装置。
ＦＦ．波形パルスの識別
ＦＦ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは、
該粒子を含む流体を送達するための流体送達システム、該流体を受容し、それを流れに形成し、および、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置、および該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供する仕分けシステムを含み、改良点が：
該フローサイトメトリー装置からの波形パルスを含む時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、および、該波形パルスに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供し、ここに該波形パルスおよび対応するデジタル情報が特徴Ａおよび特徴Ｂを示すＡ／Ｄ変換器；
特徴Ａを示すものまたは特徴Ｂを示すものとしてデジタル情報を識別し、および、識別したデジタル情報の関数として該仕分けシステムに仕分けシグナルを提供するデジタルシグナルプロセッサー
を含む該フローサイトメトリーシステム。
ＦＦ２． 該デジタルシグナルプロセッサーが、デジタル情報によって表わされる波形パルスを検出する命令、検出した波形パルス中の特徴を抽出する命令、およびそれらの抽出した特徴の関数として検出した波形パルスを識別する命令を含むＦＦ１記載の装置。
ＦＦ３． 該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴と特徴Ｂを表わす抽出された特徴との間を識別する決定境界を規定する命令を含むＦＦ２の装置。
ＦＦ４． 以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、該デジタルシグナルプロセッサーが、特徴Ａを表わす抽出した特徴に関して、および、特徴Ｂを表す抽出した特徴に関して決定境界の相対的位置を調整するＦＦ３記載の装置。
ＦＦ５． 該デジタルシグナルプロセッサーがデジタル情報に対応する波形パルスを検出するパルス検出プロセッサーを含み、および、該デジタルシグナルプロセッサーが検出した波形パルスの関数としてデジタル情報を分類するＦＦ１記載の装置。
ＦＦ６． さらに、変換器のサンプリング速度の２分の１以下の周波数でアナログアウトプットを濾過するためのフィルタを含み、該変換器が濾過したアナログアウトプットを対応するデジタル情報に変換するＦＦ５記載の装置。
ＦＦ７． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関して該少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるか、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＦＦ１記載の装置。
ＦＦ８． さらに、粒子を照らして対応する波形パルスを生成するための同期サンプリングと同期したパルス化照明装置を含むＦＦ１記載の装置。
ＦＦ９． 該デジタルシグナルプロセッサーが、デジタル情報によって表される波形パルスを検出するためのパルス検出プロセッサーを含み、該デジタルシグナルプロセッサーが特徴Ａを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてまたは特徴Ｂを有する粒子の集団の変動の係数の関数としてデジタル情報を分類するＦＦ８記載の装置。
ＧＧ．ＬＥＤアレイブレークオフセンサー
ＧＧ１． ブレークオフ（break-off）位置で液滴に破砕される流体の連続流れと用いる装置であって：
流れを照らすための流れの１の側に位置する光源；
流れに対して実質的に平行な軸に沿って方向付けられるように適合された流れの他の側に位置する線形フォトアレイ、ここに該フォトアレイは流れを通過する光源からの光を検出するように適合され、および、該フォトアレイは検出した光に対応するアウトプットシグナルを提供するように適合され；
アウトプットシグナルを受容し、ブレークオフ位置の位置に対応する位置シグナルを提供する制御
を含む該装置。
ＧＧ２． さらに、ブレークオフ位置の位置を示す表示を提供するためのディスプレイを含むＧＧ１記載の装置。
ＧＧ３． さらに、ブレークオフ位置の位置を変化させるため流れに力を加えるトランスデューサーを含み、該トランスデューサーはインプットシグナルの関数として力の大きさを変化し、ディテクターからの位置シグナルをインプットシグナルとしてトランスデューサーに提供するＧＧ１記載の装置。
ＧＧ４． さらに、ブレークオフ位置の位置の関数として、流れに加える力の大きさの変化を特定するためのルックアップ表を含むＧＧ３記載の装置。
ＨＨ．フローサイトメトリーブレークオフセンサー
ＨＨ１． 特徴Ａを有する粒子および特徴Ｂを有する粒子を含む粒子の混合物を仕分けするためのフローサイトメトリーシステムにおいて、該システムは、
該粒子を含む流体を送達するための流体送達システム、該流体を受容し、それを流れに形成し、および、フローサイトメトリーを用いて該特徴に従って粒子を分類するためのフローサイトメトリー装置、および、該分類に従っておよび仕分け戦略に従って粒子を仕分けして所望の粒子を含む少なくとも１の集団を提供する仕分けシステムを含み、改良点が：
流れを照らすための流れの１の側の第２の位置に位置する光源；
流れに対して実質的に平行な軸に沿って方向付けられるように適合された流れの他の側の第２の位置に位置する線形フォトアレイ、ここに該フォトアレイは流れを通過する光源からの光を検出するように適合され、および、該フォトアレイは検出した光に対応するアウトプットシグナルを提供するように適合され；
第２の位置の位置を示すアウトプットシグナルを受容するための制御、ここに該制御はアウトプットシグナルの関数として該トランスデューサーの作業を変化する
ことを含む該フローサイトメトリーシステム。
ＨＨ２． さらに、以下のもの：（１）特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子のいずれかに関する少なくとも１の集団の純度；および（２）該流れ中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の全量に対する該少なくとも１の集団中の特徴Ａ粒子または特徴Ｂ粒子の量、のうちの少なくとも１の関数として、仕分けシステムを制御してその仕分け戦略を変化させるか、または、流体送達システムを制御して流体が送達される速度を変化させるためのフローサイトメトリー装置から受容した情報に応答する制御を含むＨＨ１記載の装置。
ＨＨ３． さらに、ブレークオフ位置の位置を示す表示を提供するためのディスプレイを含むＨＨ１記載の装置。
ＨＨ４． さらに、ブレークオフ位置の位置を変化させるために流れに力を加えるトランスデューサーを含み、該トランスデューサーはインプットシグナルの関数として力の大きさを変化し、ディテクターからの位置シグナルがインプットシグナルとしてトランスデューサーに提供されるＨＨ１記載の装置。
ＨＨ５． さらに、ブレークオフ位置の位置の関数として、流れに加える力の大きさの変化を特定するためのルックアップ表を含むＨＨ４記載の装置。
ＩＩ．落射照明型光学装置を有する液滴ソーター
ＩＩ１． 粒子の１またはそれを超える特徴に従って流体流れに含まれる粒子を仕分けする装置であって、該システムは：
該粒子を含む流体流れを第１の位置に送達するための、および、第２の位置で流れの液滴への破砕（break into）を引き起こすためのフローサイトメトリー装置、該フローサイトメトリー装置は該特徴に従って粒子を分類するために、および、液滴に含まれる粒子の分類に従って該液滴を仕分けするためにフローサイトメトリーを用いるのに作動可能であり；
該フローサイトメトリー装置はフォーカシングレンズを含む落射照明型光学装置システムを含み、該光学装置システムは該細胞がビームを通過するように、該フォーカシングレンズを通るレーザービームを該第１の位置において流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向けるのに作動可能であり、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じる該装置。
ＩＩ２． 該粒子が細胞であるＩＩ１記載の装置。
ＩＩ３． 該粒子が精子細胞であるＩＩ１記載の装置。
ＩＩ４． 該ビームが該光学システムによって該第１の位置において流体流れ上のスポットとしてフォーカスされ、該スポットが流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れに対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅が当該スポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さい一般的に楕円形を有するＩＩ３記載のシステム。
ＩＩ５． 該光学装置システムが、該放射を検出するための該フォーカシングレンズの背後に単一フォトディテクターを含むＩＩ３記載の装置。
ＩＩ６． 該フローサイトメトリー装置が、さらに、該ビームを通過する前に粒子を所望の方向に向ける傾向の力がそれに働くように形成された内部表面を有するノズルを含むＩＩ１記載の装置。
ＩＩ７． 該ノズルが、ノズルの縦方向の軸の周りに回転可能であり、該所望の粒子方向をビーム軸に対して調整するＩＩ４記載の装置。
ＩＩ８． 該フローサイトメトリー装置が、流体流れを上方、非垂直方向に向くよう方向付けられたノズルを含むＩＩ１記載の装置。
ＩＩ９． 該ノズルが、非反射、非放射コーティングで被覆された外部表面を有するＩＩ１記載の装置。
ＩＩ１０． 該光学装置システムが、該放射を検出するための該フォーカシングレンズの背後に単一フォトディテクターを含むＩＩ１記載の装置。
ＩＩ１１． 該フローサイトメトリー装置が、ノズルオリフィスを有するノズル、および、中を通って該流体流れが該第１の位置に送達されるオリフィスから伸長するキャピラリー管を含むＩＩ１記載の装置。
ＩＩ１２． 該第１の位置が該キャピラリー管の内側に存在するＩＩ９記載の装置。
ＩＩ１３． 該フローサイトメトリー装置が、複数の流体流れを同時に分析するのに作動可能な複数のフローサイトメトリーユニットを含み、各フローサイトメトリーユニットが該落射照明型光学装置システムを含むＩＩ１記載のシステム。
ＪＪ．落射照明型光学装置を用いて粒子を仕分けする方法
ＪＪ１． 粒子の１またはそれを超える特徴に従って流体流れ中に含まれる粒子を仕分けする方法であって：
該粒子を含む流体流れを第１の位置に送達し、第２の位置で流れの液滴への破砕を引き起こし；ついで
フローサイトメトリー法を用いて、該特徴に従って粒子を分類し、および、液滴中に含まれる粒子の分類に従って該液滴を仕分けすることを含み、
該フローサイトメトリー法が、該細胞がビームを通過するように、フォーカシングレンズを通るレーザービームを該第１の位置において流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向けることを含み、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じることを含む該方法。
ＪＪ２． 該粒子が細胞であるＪＪ１記載の方法。
ＪＪ３． 該粒子が精子細胞であるＪＪ１記載の方法。
ＪＪ４． 流体流れを送達する工程が、２０ないし４０ｐｓｉの圧力および３０,０００ないし５０,０００精子細胞／秒の速度で、５０ないし７０ミクロンの直径を有するノズルオリフィスを通して該流れを向けることを含むＪＪ３記載の方法。
ＪＪ５． さらに、流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅がビームスポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さい一般的に楕円形のスポットとして該流体流れ上に該ビームをフォーカシングすることを含むＪＪ３記載の方法。
ＪＪ６． 該精子細胞の頭部が流れの流れの方向で長さを有するＤＮＡ領域を含み、および、該ビームスポット幅が該ＤＮＡ領域の長さよりも小さいＪＪ５記載の方法。
ＪＪ７． さらに、各々が精子細胞を含む複数の離れた流体流れを生成することを含み、かかる流れの各々について工程（ａ）（ｂ）を行うＪＪ３記載の方法。
ＪＪ８． さらに、一般的なレーザービームを用いて該流体流れを照らすことを含むＪＪ７記載の方法。
ＪＪ９． さらに、該ビームを通過する前に粒子を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせることを含むＪＪ１記載の方法。
ＪＪ１０． さらに、該力を働かせるために形成したノズルを通して流体流れを流動させ、および、ノズルの縦方向の軸の周りにノズルを回転させてビーム軸に対する該所望の粒子の方向を調整することを含むＪＪ４記載の方法。
ＪＪ１１． 該フローサイトメトリー法が、さらに、１のみのフォトディテクターを用いて電磁放射の放射を検出することを含むＪＪ１記載の方法。
ＫＫ． 落射照明型光学装置を有する光損傷ソーター
ＫＫ１． 粒子の１またはそれを超える特徴に従って流体流れに含まれる粒子を仕分けする装置であって：
該粒子を含む流体流れを第１の位置に送達し、該特徴に従って粒子を分類し、および、該分類に従って該粒子を所望の粒子を含む少なくとも１の集団に仕分けするためのフローサイトメトリー装置；および
該流れ中の粒子を溶融するためのレーザーを含み、
該フローサイトメトリー装置が、フォーカシングレンズを含む落射照明型光学装置システムを含み、該光学装置システムが、該細胞がビームを通過するように、該フォーカシングレンズを通るレーザービームを該第１の位置において流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向けるのに作動可能であり、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じる該装置。
ＫＫ２． 該粒子が細胞であるＫＫ１記載の装置。
ＫＫ３． 該細胞が精子細胞であるＫＫ２記載の装置。
ＫＫ４． 該フローサイトメトリー装置が、さらに、該ビームを通過する前に粒子を所望の方向に向ける傾向の力がそれに働くように形成された内部表面を有するノズルを含むＫＫ１記載の装置。
ＫＫ５． 該ノズルがノズルの縦方向の軸の周りに回転可能であり、該所望の粒子方向をビーム軸に対して調整するＫＫ４記載の装置。
ＫＫ６． ＫＫ１（請求項ＡＡ２ほかのコピー）
ＬＬ． 落射照明型光学装置および光損傷を用いて粒子を仕分けする方法
ＬＬ１． 粒子の１またはそれを超える特徴に従って流体流れ中に含まれる粒子を仕分けする方法であって：
フローサイトメトリー法を用い、該特徴に従って流体流れ中の粒子を分類し、該粒子の分類に従って該粒子を仕分けし；ついで
該流体流れ中の粒子を溶融することを含み、
該フローサイトメトリー法が、該細胞がビームを通過するように、フォーカシングレンズを通るレーザービームを流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向けることを含み、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じる該方法。
ＭＭ．落射照明型光学装置を有する精子ソーター
ＭＭ１． 染色体ＤＮＡの特徴に従って精子細胞を仕分けするためのシステムであって：
該細胞を含む流体流れを第１の位置に送達するための、および、第２の位置で流れの液滴への破砕を引き起こすためのフローサイトメトリー装置、ここに該フローサイトメトリー装置は該ＤＮＡ特徴に従って細胞を分類するのに、および、液滴中に含まれる細胞の分類に従って該液滴を仕分けするのに作動可能であり、
該フローサイトメトリー装置は、フォーカシングレンズを含む落射照明型光学装置システムを含み、該光学装置システムは、該細胞がビームを通過するように、該フォーカシングレンズを通るレーザービームを該第１の位置において流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向けるのに作動可能であり、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じる該システム。
ＭＭ２． 該光学装置システムが、さらに、該放射の少なくとも幾つかを検出し、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換するのに作動可能な該フォーカシングレンズの背後の該ビーム軸上のフォトディテクターを含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ３． 該液滴を、各々が少なくとも１の生Ｘ精子細胞を含む第１の液滴および各々が少なくとも１のＹ細胞を含む第２の液滴に仕分けするＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ４． 第１の液滴の少なくとも幾つかが生Ｘ細胞および生Ｙ細胞を含むＭＭ３記載のシステム。
ＭＭ５． 該フローサイトメトリー装置が、該ビームを通過する前に細胞を所望の方向に向ける傾向の力がそれに働くように形成された内部表面を有するノズルを含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ６． 該ノズルがノズルの縦方向の軸の周りに回転可能であり、該所望の細胞方向をビーム軸に対して調整するＭＭ５記載のシステム。
ＭＭ７． 該ビーム軸が、該第１の位置において、流れの縦方向の軸に対して斜めである入射の角度で流体流れを交差するＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ８． 該ビームが該第１の位置における流体流れ上のスポットとして該光学装置システムによってフォーカスされ、該スポットが流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅が当該ビームスポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さい一般的に楕円形を有するＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ９． 該精子細胞の頭部が、流れの流れの方向で長さを有するＤＮＡ領域を含み、該ビームスポット幅が該ＤＮＡ領域の長さよりも短いＭＭ８記載のシステム。
ＭＭ１０． 該フローサイトメトリー装置が、同時に複数の流体流れを分析するのに作動可能である複数のフローサイトメトリーユニットを含み、各フローサイトメトリーユニットが該落射照明型光学装置システムを含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ１１． 該フローサイトメトリー装置が、流体流れを上方、非垂直方向に向くよう方向付けられたノズルを含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ１２． 該光学装置システムが、該放射を検出するための１のみのフォトディテクターを含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ１３． さらに、少なくとも１の該第１の液滴を収集するためのコレクターを含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ１４． 該フローサイトメトリー装置が、ノズルオリフィスを有するノズル、および、該流体流れが通って該第１の位置に送達されるオリフィスから伸長するキャピラリー管を含むＭＭ１記載のシステム。
ＭＭ１５． 該第１の位置が該キャピラリー管の内側に存在するＭＭ１４記載のシステム。
ＭＭ１６． 該光学装置システムが、管を通って流れる流れにビームを伝達するために、該キャピラリー管に光学的に結合されているＭＭ１５記載のシステム。
ＮＮ．落射照明型光学装置を用いて精子を仕分けする方法
ＮＮ１． 動物精子細胞の染色体ＤＮＡ特性に従って動物精子細胞を仕分けする方法であって：
（ａ）該細胞を含む流体流れを第１の位置に送達し、および、第２の位置において流れを液滴に破砕し；
（ｂ）該細胞がビームを通過するように、フォーカシングレンズを通るレーザービームを該第１の位置において流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向け、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じ；
（ｃ）該放射の少なくとも幾つかを検出し、および、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換し；
（ｄ）該電気シグナルを処理し、該ＤＮＡ特性に従って細胞を分類し；ついで
（ｅ）液滴中に含まれる細胞の分類に従って該液滴を仕分けする
工程を含む該方法。
ＮＮ２． 該液滴を、各々が少なくとも１の生Ｘ精子細胞を含む第１の液滴および各々が少なくとも１のＹ細胞を含む第２の液滴に仕分けするＮＮ１記載の方法。
ＮＮ３． 該第１液滴の少なくとも幾つかが、生Ｘ細胞および生Ｙ細胞を含むＮＮ２記載の方法。
ＮＮ４． 工程（ａ）が、２０ないし４０ｐｓｉの圧力および３０,０００ないし５０,０００精子細胞／秒の速度で、５０ないし７０ミクロンの直径を有するノズルオリフィスを通して該流れを向けることを含むＮＮ１記載の方法。
ＮＮ５． さらに、該ビームを通過する前に、細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせることを含むＮＮ１記載の方法。
ＮＮ６． 該精子細胞が広い面および狭い角を有する頭部を有し、および、該所望の方向がビームが該広い面に当たるところのものであるＮＮ５記載の方法。
ＮＮ７． 該流体送達工程がノズルを通して該流れを向けることを含み、および、該方法がさらにノズルをノズルの縦方向の軸の周りに回転させて、該所望の細胞方向をビーム軸に対して調整することを含むＮＮ６記載の方法。
ＮＮ８． さらに、該ビームを、流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れに対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅が当該スポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さい一般的に楕円形のスポットとして該流体流れ上にフォーカスすることを含むＮＮ１記載の方法。
ＮＮ９． 該精子細胞の頭部が流れの流れの方向で長さを有するＤＮＡ領域を含み、および、該ビームスポットの幅が該ＤＮＡ領域の長さよりも小さいＮＮ８記載の方法。
ＮＮ１０． 工程（ｄ）が少なくとも該第１の液滴をそらせることを含むＮＮ５記載の方法。
ＮＮ１１． さらに、長さおよび幅寸法を有する開口を有する空間フィルター（spatial filter）を含む濾過システムを通して該放射のうちの少なくとも幾つかを向けることを含み、該寸法のうちの少なくとも１が開口のサイズを変化するのに調整可能であるＮＮ１記載の方法。
ＮＮ１２． さらに、該流体流れを上方、非垂直の軌跡に沿って向けることを含むＮＮ１記載の方法。
ＮＮ１３． さらに、各々が精子細胞を含む複数の離れた流体流れを生成することを含み、各々のかかる流れに対して工程（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および（ｄ）を行うＮＮ１記載の方法。
ＮＮ１３Ａ． さらに、一般のレーザービームを用いて該流体流れを照らすことを含むＮＮ１３記載の方法。
ＮＮ１４． 該流体流れが、流体の一般の供給からの流体を含むＮＮ１３記載の方法。
ＮＮ１５． 該流体流れをキャピラリー管を通して該第１の位置に送達するＮＮ１記載の方法。
ＯＯ．落射照明型光学装置を有する精子アナライザー
ＯＯ１． 染色体ＤＮＡ特徴によって動物精子細胞を分類するための装置であって：
精子細胞を含む流体流れを第１の位置に送達するための、および、流れが該第１の位置に達する前に精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせるためのノズルシステム；
該細胞がビームを通過するように、０°以外の入射の角度で該第１の位置において該流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に電磁的放射のビームを向け、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射的の放射を後方方向に生じるための落射照明型光学装置システム；
該放射のうちの少なくとも幾つかを検出し、および、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換するのに作動可能なフォトディテクター；および
該電気シグナルを処理し、および、該ＤＮＡ特徴に従って細胞を分類するためのプロセッサー
を含む該装置。
ＯＯ２． 該ノズルシステムが液滴細胞仕分けシステムの一部分であるＯＯ１記載の装置。
ＯＯ３． 該ノズルシステムが光損傷細胞仕分けシステムの一部分であるＯＯ１記載の装置。
ＯＯ４． 該ノズルシステムが流体スイッチング細胞仕分けシステムの一部分であるＯＯ１記載の装置。
ＯＯ５． 該光学装置システムが、さらに、該放射のうちの少なくとも幾つかを検出し、および、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換するのに作動可能な該フォーカシングレンズの背後の該ビーム軸上のフォトディテクターを含むＯＯ１記載の装置。
ＯＯ６． 該フローサイトメトリー装置が、該ビームを通過する前に細胞を所望の方向に向ける傾向の力がそれに働くように形成された内部表面を有するノズルを含むＯＯ１記載の装置。
ＯＯ７． 該ノズルがノズルの縦方向の軸の周りに回転可能であり、該所望の細胞の方向をビーム軸に対して調整するＯＯ６記載の装置。
ＯＯ８． 該ビーム軸が、該第１の位置において、流れの縦方向の軸に対して斜めである入射の角度で流体流れを交差するＯＯ１記載の装置。
ＯＯ９． 該ビームが該光学システムによって該第１の位置において流体流れ上のスポットとしてフォーカスされ、該スポットが流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅が当該ビームスポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さい一般的に楕円形を有するＯＯ１記載の装置。
ＯＯ１０． 該精子細胞の頭部が流れの流れの方向で長さを有するＤＮＡ領域を含み、該ビームスポットの幅が該ＤＮＡ領域の長さよりも小さいＯＯ９記載の装置。
ＯＯ１１． 該フローサイトメトリー装置が、複数の流体流れを平行して同時に分析するのに作動可能な複数のフローサイトメトリーユニットを含み、各フローサイトメトリーユニットが該落射照明型光学装置システムを含むＯＯ１記載の装置。
ＯＯ１２． 該ノズルシステムが、流体流れを上方、非垂直方向に向けるように方向付けられたノズルを含むＯＯ１記載の装置。
ＯＯ１３． 該光学装置システムが、該放射を検出するための１のみのフォトディテクターを含むＯＯ１記載の装置。
ＯＯ１４． 該フローサイトメトリー装置が、ノズルオリフィスを有するノズル、および、中を通って該流体流れが該第１の位置に送達されるオリフィスから伸長するキャピラリー管を含むＯＯ１記載の装置。
ＯＯ１５． 該第１の位置が該キャピラリー管の内側に存在するＯＯ１４記載の装置。
ＯＯ１６． 該光学装置システムが、管を通って流れる流れにビームを伝達するために、該キャピラリー管に光学的に結合されているＯＯ１５記載の装置。
ＰＰ．落射照明型光学装置を用いて精子を分析する方法
ＰＰ１． 染色体ＤＮＡ特徴によって動物精子細胞を分類する方法であって：
（ａ）精子細胞を含む流体流れを第１の位置に送達し、および、流れが該第１の位置に達する前に精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせ；
（ｂ）該細胞がビームを通過するように、０°以外の入射の角度で該第１の位置において該流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に電磁的放射のビームを向け、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じ；
（ｃ）該放射の少なくとも幾つかを検出し、および、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換し；ついで
（ｄ）該電気シグナルを処理し、該ＤＮＡ特徴に従って細胞を分類する
工程を含む該方法。
ＰＰ２． さらに、該ＤＮＡ特徴に従って該細胞を仕分けすることを含むＰＰ１記載の特徴。
ＰＰ３． さらに、光損傷仕分けプロセスを用いて該細胞を仕分けすることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ４． さらに、流体スイッチング仕分けプロセスを用いて該細胞を仕分けすることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ５． さらに、液滴仕分けプロセスを用いて該細胞を仕分けすることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ６． 工程（ａ）が、２０ないし４０ｐｓｉの圧力および３０,０００ないし５０,０００精子細胞／秒の速度で、５０ないし７０ミクロンの直径を有するノズルオリフィスを通して該流れを向けることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ７． さらに、該ビームを通過する前に精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ８． 該精子細胞が広い面および狭い角を有する頭部を有し、および、該所望の方向がビームが該広い面に当たるところのものであるＰＰ７記載の方法。
ＰＰ９． 該流体送達工程がノズルを通して該流れを向けることを含み、および、該方法がさらにノズルをノズルの縦方向の軸の周りに回転させて、該所望の細胞の方向をビーム軸に対して調整することを含むＰＰ８記載の方法。
ＰＰ１０． さらに、流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅がビームスポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さい一般的に楕円形のスポットとして該流体流れ上に該ビームをフォーカスすることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ１１． 該精子細胞の頭部が、流れの流れの方向に長さを有するＤＮＡ領域を含み、該ビームスポットの幅が該ＤＮＡ領域の長さよりも小さいＰＰ１０記載の方法。
ＰＰ１２． さらに、長さおよび幅寸法を有する開口を有する空間フィルタを含む濾過システムを通して該放射のうちの少なくとも幾つかを向けることを含み、該寸法のうちの少なくとも１が開口のサイズを変化するのに調整可能であるＰＰ１記載の方法。
ＰＰ１３． さらに、該流体流れを上方、非垂直の軌跡に沿って向けることを含むＰＰ１記載の方法。
ＰＰ１４． さらに、各々が精子細胞を含む複数の離れた流体流れを生成することを含み、各々のかかる流れに対して工程（ａ）、（ｂ）、（ｃ）および（ｄ）を行うＰＰ１記載の方法。
ＰＰ１５． さらに、一般のレーザービームを用いて該流体流れを照らすことを含むＰＰ１４記載の方法。
ＰＰ１６． 該流体流れが、流体の一般の供給からの流体を含むＰＰ１４記載の方法。
ＰＰ１７． 該流体流れをキャピラリー管を通して該第１の位置に送達するＰＰ１記載の方法。
ＱＱ．斜め入射の角度の落射照明型光学装置を有する粒子アナライザー
ＱＱ１． 流体流れに含まれる粒子を分析するための装置であって：
流体流れの長軸に対して斜めである入射の角度で該流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に電磁的放射のビームを向けるための落射照明型光学装置システム；
スポットとして流体流れ上に該電磁的放射のビームをフォーカスするための該ビーム軸路上のフォーカシングレンズを含む該落射照明型システム、ここに該粒子は、該スポットを通過し、後方方向で該ビーム軸に沿って向けた該粒子からの電磁的放射の放射を生じ；および
該放射のうちの少なくとも幾つかを検出し、および、それを該粒子に関する情報を得るために処理すべき電気シグナルに変換するためのフォーカシングレンズの背後のフォトディテクター
を含む該装置。
ＱＱ２． 該入射の角度が５ないし４５°の範囲内であるＱＱ１記載の装置。
ＱＱ３． 該入射の角度が１５ないし３０°の範囲内であるＱＱ１記載の装置。
ＱＱ４． 該粒子が細胞であって、該情報が細胞のＤＮＡ特徴に関するＱＱ１記載の装置。
ＱＱ５． 該粒子が精子細胞であって、該情報が細胞のＸ／Ｙ染色体ＤＮＡに関するＱＱ１記載の装置。
ＱＱ６． さらに、該流体流れを方向付けるための、および、流れが該ビームを通過する前に精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせるためのノズルシステムを含むＱＱ５記載の装置。
ＱＱ７． 該ノズルシステムがノズルを含み、該ビームがノズルから１.０ｍｍ未満の位置で該流体流れに当たるＱＱ１記載の装置。
ＱＱ８． さらに、該情報に従って該粒子を仕分けするための液滴細胞仕分けシステムを含むＱＱ１記載の装置。
ＱＱ９． さらに、該情報に従って該粒子を仕分けするための光損傷細胞仕分けシステムを含むＱＱ１記載の装置。
ＱＱ１０． さらに、該情報に従って該粒子を仕分けするための流体スイッチング細胞仕分けシステムを含むＱＱ１記載の装置。
ＲＲ．斜め落射照明型光学装置を用いて粒子を分析する方法
ＲＲ１． 流体流れ中に含まれる粒子を分析する方法であって：
流体流れの長軸に対して斜めである入射の角度で該流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に電磁的放射のビームを向け；
スポットとして流体流れ上に該電磁的放射のビームをフォーカスし、ここに該粒子は、該スポットを通過し、後方方向で該ビーム軸に沿って向けられた該粒子からの電磁的放射の放射を生じ；
該放射のうちの少なくとも幾つかを検出し、および、それを該粒子の特徴を示す電気シグナルに変換し；ついで
該電気シグナルを処理して該特徴に関する情報を得る
ことを含む該方法。
ＲＲ２．ＲＲ１（ＱＱ２−ほかに類似した請求項を加える）
ＳＳ．落射照明型光学装置および楕円スポットフォーカスを有する細胞アナライザー
ＳＳ１． 流体流れ中の細胞のＤＮＡ特徴を分析するための装置で、ここに各細胞は流れの流れの方向に長さを有するＤＮＡ領域を含み：
ビームが該流体流れを交差するようにビーム軸に沿って前方方向で電磁的放射のビームを向けるための落射照明型光学装置システム；
該光学装置システムは、流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有する一般的に楕円スポットとして流体流れ上にビームをフォーカスするための該ビーム軸上のフォーカシングレンズ、ここにビームスポットの幅は該ＤＮＡ領域の長さよりも小さく、該細胞は該スポットを通過して、該ＤＮＡ特徴を示す該ＤＮＡ領域からの放射を含む該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じるように適合されており；
染色体領域からの該放射の少なくとも幾つかを検出し、およびそれを該染色体特徴を示す電気シグナルに変換するためのフォトディテクター；および
該電気シグナルを処理し、該染色体特徴を同定し、および、該染色体特徴に従って精子細胞を分類するためのプロセッサー
を含む該装置。
ＳＳ１０． 該染色体特徴が精子細胞の性別を示すＳＳ９記載の装置。
ＳＳ１１． 該精子細胞がウシ精子細胞であるＳＳ１０記載の装置。
ＳＳ１２． 該染色体領域が、核の縦方向の中央のいずれかの端の核の長さの約２０％以下で伸長する核の領域内に位置するＳＳ１０記載の装置。
ＳＳ１３． 該染色体領域が、核の縦方向の中央のいずれかの端の核の長さの約１０ないし１５％以下で伸長する核の領域内に位置するＳＳ１０記載の装置。
ＳＳ１４． さらに、該フォトディテクターから時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、ついで、該時変アナログアウトプットに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供するＡ／Ｄ変換器を含み、ここに該時変アナログアウトプットおよび対応するデジタル情報が該染色体特徴を示し；ここに該プロセッサーがデジタル情報を分析および分類するデジタルシグナルプロセッサーを含むＳＳ９記載の装置。
ＳＳ１５． 該スポットの幅が約３.０μｍ未満であるＳＳ９記載の装置。
ＳＳ１６． 該スポットの長さが約８０μｍであるＳＳ１５記載の装置。
ＳＳ１７． さらに、流れが該ビームを通過する前に精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせるためのノズルシステムを含むＳＳ９記載の装置。
ＳＳ１８． さらに、該染色体ＤＮＡ特徴に従って該精子細胞を仕分けするための液滴細胞仕分けシステムを含むＳＳ９記載の装置。
ＳＳ１９． さらに、該染色体ＤＮＡ特徴に従って該精子細胞を仕分けするための光損傷精子細胞仕分けシステムを含むＳＳ９記載の装置。
ＳＳ２０． さらに、該染色体ＤＮＡ特徴に従って該精子細胞を仕分けするための流体スイッチング精子細胞を含むＳＳ９記載の装置。
ＴＴ．落射照明型光学装置および楕円スポットフォーカスを用いて細胞を分析する方法
ＴＴ１． 流体流れ中の細胞のＤＮＡ特徴を分析する方法であって、各細胞は流れの流れの方向で長さを有するＤＮＡ領域を含み：
ビームが該流体流れを交差するようにビーム軸に沿って前方方向で電磁的放射のビームを向け；
流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有する一般的に楕円スポットとして、流体流れ上に電磁的放射のビームをフォーカスし、ここにビームスポットの幅は該ＤＮＡ領域の長さよりも小さく、該細胞は該スポットを通過して、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じるように適合されており；
該放射を検出し、および、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換し；ついで
精子頭部のＤＮＡ領域からの放射からの電気シグナルと精子細胞の他の領域からの放射からの電気シグナルとの間を識別することを含んで、該電気シグナルを処理し；ついで
該ＤＮＡ特徴に従って細胞を分類する
ことを含む該方法。
ＴＴ２． 該細胞が精子細胞であるＴＴ１記載の方法。
ＴＴ３． さらに、流れが該ビームを通過する前に流れ中の細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせることを含むＴＴ１記載の方法。
ＴＴ４． さらに、該ＤＮＡ特徴に従って該細胞を液滴仕分けすることを含むＴＴ１記載の方法。
ＴＴ５． さらに、該ＤＮＡ特徴に従って該粒子を光損傷仕分けすることを含むＴＴ１記載の方法。
ＴＴ６． さらに、該ＤＮＡ特徴に従って該粒子を流体スイッチング仕分けすることを含むＴＴ１記載の方法。
ＴＴ７． 流動の方向を有する流体流れ中の動物精子細胞の染色体ＤＮＡ特徴を分析する方法で、各精子細胞は少なくとも１の染色体を含む局在化染色体領域を含む核を有する頭部を有し、該核は流れの流れの方向の長さを有し：
流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有する一般的に楕円スポットとして流体流れ上に電磁的放射のビームをフォーカスし、ここにビームスポットの幅は該核の長さよりも小さく、該精子細胞は該スポットを通過して、領域の染色体特徴を示す該染色体領域からの放射を含む、精子細胞からの電磁的放射の放射を生じるように適合されており；
染色体領域からの該放射の少なくとも幾つかを検出し、および、それを該染色体特徴を示す電気シグナルに変換し；
該染色体特徴を同定することを含めて、該電気シグナルを処理し；ついで
該染色体特徴に従って精子細胞を分類する
ことを含む該方法。
ＴＴ８． 該染色体特徴が精子細胞の性別を示すＴＴ７記載の方法。
ＴＴ９． 該精子細胞がウシ精子細胞であるＴＴ８記載の方法。
ＴＴ１０． 該染色体領域が、核の縦方向の中央のいずれかの端の核の長さの約２０％以下で伸長する核の領域内に位置するＴＴ８記載の方法。
ＴＴ１１． 該染色体領域が、核の縦方向の中央のいずれかの端の核の長さの約１０ないし１５％以下で伸長する核の領域内に位置するＴＴ１０記載の方法。
ＴＴ１２． 該電気シグナルが時変アナログアウトプットを含み、および、さらに、時変アナログアウトプットを同期してサンプリングし、ついで、該時変アナログアウトプットに対応するデジタル情報を含むアウトプットを提供することを含み、ここに該時変アナログアウトプットおよび対応するデジタル情報が該染色体特徴を示し；ここに該処理がデジタル情報を分析することを含み；および、該分類が分析したデジタル情報を分類することを含むＴＴ７記載の方法。
ＴＴ１３． 該スポットの幅が約３.０μｍ未満であるＴＴ７記載の方法。
ＴＴ１４． 該スポットの長さが約１８０μｍよりも大きいＴＴ１３記載の方法。
ＴＴ１５． さらに、流れが該ビームを通過する前に精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせることを含むＴＴ７記載の方法。
ＴＴ１６． さらに、該染色体ＤＮＡ特徴に従って該精子細胞を液滴仕分けすることを含むＴＴ７記載の方法。
ＴＴ１７． さらに、該染色体ＤＮＡ特徴に従って該精子細胞を光損傷仕分けすることを含むＴＴ７記載の方法。
ＴＴ１８． さらに、該染色体ＤＮＡ特徴に従って精子細胞を流体スイッチング仕分けすることを含むＴＴ７記載の方法。
ＵＵ．１のみのフォトディテクターを有する精子ソーター
ＵＵ１． 細胞の染色体ＤＮＡ特徴に従って精子細胞を分類および仕分けするための装置であって：
該細胞を含む流体流れを第１の位置に送達し、および、第２の位置で流れの液滴への破砕を生じるためのノズルシステム、ここに該ノズルシステムは該第１の位置に達する前に細胞を所望の方向に向ける傾向の力がそれに働くように形成された内部表面を有するノズルを含み；
流れ中の細胞が該ビームを通過して細胞からの電磁的放射の放射を生じるように、電磁的放射のビームを該第１の位置において流体流れを交差するよう向ける光学装置システム；
該放射のうちの少なくとも幾つかを検出し、およびそれを電気シグナルに変換する１のみのフォトディテクター；および
該ＤＮＡ特徴に従って細胞を分類し、および、液滴中に含まれる細胞の分類に従って該液滴を仕分けするシステム
を含む該装置。
ＵＵ２． 該光学装置システムが落射照明型システムであるＵＵ１記載の装置。
ＶＶ．方向付けノズル
ＶＶ１． 染色体含量によって流体流れ中の動物精子細胞を仕分けするフローサイトメトリー装置に使用するノズルであって：
それを通して該流体流れが流動するように適合される内部表面およびオリフィスを有するノズル本体；
該ノズルオリフィスに向かう下流方向で該流体流れのスピードを進行的に加速する第１、第２および第３の軸方向テーパ処理領域（axially tapered region）を含むノズルの該内部表面を含み、該領域の少なくとも２は精子細胞を所望の方向に向ける傾向の力を該流体流れに加えるための異なる方向に方向付けられた一般的に楕円断面を有する該ノズル。
ＶＶ２． 該少なくとも２の領域のうちの１の該一般的に楕円断面形が、該少なくとも２の領域のうちの他のものの一般的に楕円断面形に対して約９０°で方向付けられているＶＶ１記載のノズル。
ＶＶ３． 第１および第２の領域の該一般的に楕円断面形が実質的に同一の方向に方向付けられて第１のねじりゾーンを画定し、第２のねじりゾーンを構成している第３の領域の一般的に楕円断面形が第１および第２の領域の一般的に楕円断面形に対して約９０°で方向付けられている粒子を所望の方向に向ける傾向の力をそれに働かせるＶＶ２記載のノズル。
ＶＶ４． 第１のねじりゾーンが３.０ないし４.５ｍｍの軸長さを有し、第２のねじりゾーンが３.５ないし５.０ｍｍの軸長さを有するＶＶ３記載のノズル。
ＶＶ５． 第３の領域が４２ないし４８°の角度で先細るＶＶ１記載のノズル。
ＶＶ６． すべての該領域が一般的に楕円断面形を有するＶＶ１記載のノズル。
ＶＶ７． 該ノズル本体が、その上に非反射コーティングを有する外部表面を有するＶＶ１記載のノズル。
ＶＶ８． さらに、上方軌跡に沿って該流体流れを向けるために上方に尖った位置に該ノズルを載置するためのマウントを含むＶＶ１記載のノズル。
ＶＶ９． 該ノズル本体が、該マウント上で本体の縦方向の軸上で回転可能であるＶＶ８記載のノズル。
ＷＷ．精子細胞を方向付ける方法
ＷＷ１． フローサイトメトリー装置中で動物精子細胞を方向付ける方法であって：
精子細胞を含む流体を流体流れに導入し；
５０ないし７０ミクロンの範囲の直径を有するノズルオリフィスに向けて下流方向で該流体流れのスピードを加速するための１またはそれを超えるテーパ処理領域を有するノズルを通して、２０ないし４０ｐｓｉの範囲の圧力下で該精子細胞を含む流体流れを向けることを含み、ここに該１またはそれを超えるテーパ処理領域が、３０,０００ないし５０,０００精子細胞／秒の範囲の速度で通過する際に、細胞を所望の方向に向ける傾向のねじり力を該流体流れに加えるための一般的に楕円断面形を有する該方法。
ＷＷ２． 該ノズルが、ノズルオリフィスに向けて該流体流れを進行的に加速するための３またはそれを超えるテーパ処理領域を有するＷＷ１記載の方法。
ＷＷ３． 該ノズルが、該３またはそれを超えるテーパ処理領域中のノズルの内部表面によって画定される２のねじりゾーンを有するＷＷ２記載の方法。
ＷＷ４． 該ノズルが該オリフィスを通る流動軸を有し、および、該内部ノズル表面の少なくとも幾つかが該軸の回りに互いに対して回転する一般的に楕円形を有するＷＷ３記載の方法。
ＷＷ５． さらに、該流れを上方の非垂直軌跡に沿って向けることを含むＷＷ１記載の方法。
ＷＷ６． さらに、該流れを向けつつ、ノズル本体の中心縦軸上でノズル本体を回転することを含むＷＷ１記載の方法。
ＸＸ．上方尖頭（upward pointing）ノズルを有する粒子ソーター
ＸＸ１． フローサイトメトリーを用いる粒子を仕分けするための装置であって：
上方、非垂直軌跡に沿ったノズルオリフィスを通して該粒子を含む流体流れを送達するためのノズルシステム；
電磁放射のビームを向けて該第１の位置において該流体流れを交差し、粒子からの電磁的放射の放射を生じる光学装置システム；
該放射の少なくとも幾つかを検出し、および、それを該粒子特徴を示す電気シグナルに変換するのに作動可能なフォトディテクター；
該電気シグナルを処理し、および、該特徴に従って粒子を分類するためのプロセッサー；および
粒子の分類に従って該粒子を仕分けするための仕分けシステム
を含む該装置。
ＸＸ２． 該仕分けシステムが液滴仕分けシステムを含むＸＸ１記載の装置。
ＸＸ３． 該仕分けシステムが光損傷仕分けシステムを含むＸＸ１記載の装置。
ＸＸ４． 該仕分けシステムが流体スイッチング仕分けシステムを含むＸＸ１記載の装置。
ＸＸ５． 該ノズルシステムがその上に非反射コーティングを含むＸＸ１記載の装置。
ＸＸ６． ノズルオリフィスにおける該上方軌跡が、水平から離れる５ないし８５°の範囲の角度においてであるＸＸ１記載の装置。
ＸＸ７． ノズルオリフィスにおける該上方軌跡が、水平から離れる１５ないし７５°の範囲の角度においてであるＸＸ１記載の装置。
ＸＸ８． ノズルオリフィスにおける該上方軌跡が、水平から離れる３０ないし６５°の範囲の角度においてであるＸＸ１記載の装置。
ＸＸ９． ノズルオリフィスにおける該上方軌跡が、水平から離れる４５ないし６０°の範囲の角度においてであるＸＸ１記載の装置。
ＹＹ．上方尖頭ノズルを用いて粒子を仕分けする方法
ＹＹ１． フローサイトメトリーを用いて粒子を仕分けする方法であって：
該粒子を含む流体流れを上方、非垂直軌跡に沿ってノズルオリフィスを通して第１の位置に送達し；
電磁的放射のビームを向けて該流体流れを交差して、粒子からの電磁的放射の放射を生じ；
該放射の少なくとも幾つかを検出し、および、それを該粒子特徴を示す電気シグナルに変換し；
該特徴に従って該電気シグナルを処理し、および、粒子を分類し；ついで
粒子の分類に従って該粒子を仕分けする
ことを含む該方法。
ＹＹ２． 該仕分け工程が、液滴仕分けプロセスを用いることによって仕分けすることを含むＹＹ１記載の方法。
ＹＹ３． 該仕分け工程が、光損傷仕分けプロセスを用いることによって仕分けすることを含むＹＹ１記載の方法。
ＹＹ４． 該仕分け工程が、流体スイッチング仕分けプロセスを用いることによって仕分けすることを含むＹＹ１記載の方法。
ＺＺ．プロセスパラメーター
ＺＺ１． フローサイトメトリーを用いて細胞の混合物から所望の細胞集団を分離する方法であって、該集団は光検出可能な特徴を有し：
該細胞を含む流体の流れを、約２０ないし４０ｐｓｉの圧力および約３０,０００ないし５０,０００細胞／秒の細胞速度で、約５０ないし７０μｍの直径を有するノズルオリフィスを通して向け；
約２０ないし１００ＫＨｚの周波数で流体流れの液滴への破砕を引き起こし；ついで
フローサイトメトリーを用いて液滴を仕分けして該細胞の混合物から該所望の細胞集団を分離する
ことを含む該方法。
ＡＡＡ．ビジネス方法
ＡＡＡ１． その中に細胞を有する精子を取り扱うことを含むビジネスを行う方法であって：
精子の供給を得；
プログラム可能な機器を用いて複数の統合フローサイトメトリー作業を行い、ここに該作業が：（ａ）該精子の供給を受容し；（ｂ）該細胞を含む複数の流れを形成し；および（ｃ）該細胞を特徴Ａを有する細胞の第１の集団および特徴Ｂを有する細胞の第２の集団に仕分けし；ついで
第１または第２の集団を商業的使用のために分配する
ことを含む該方法。
ＡＡＡ２． 該細胞が精子細胞であって、特徴Ａが生Ｘ精子細胞を示すＡＡＡ１記載の方法。
ＡＡＡ３． 該精子がウシ精子であって、第１の集団を人工精液注入雌ウシにおける使用のために販売するＡＡＡ２記載の方法。
ＡＡＡ４． 該プログラム可能な機器が、該作業を平行して行うのに作動可能であるＡＡＡ３記載の方法。
ＢＢＢ．ビジネス方法
ＢＢＢ１． その中で細胞を有する精子の試料を取り扱うことを含むビジネスを行う方法であって：
精子の供給を得；
プログラム可能な機器を用いて複数の統合フローサイトメトリー作業を行い、ここに該作業は：（ａ）該精子の供給を受容し；ついで（ｂ）該供給の最初の部分からの該細胞を、特徴Ａを有する細胞を含む第１の集団および特徴Ｂを有する細胞を含む第２の集団を含む異なる集団へ仕分けし；ついで
最初の部分から最初に仕分けした細胞がプリセット標準に合致するかまたはそれを超える場合にのみ、該供給の残りの部分からの該細胞を、特徴Ａを有する細胞を含む第１の群および特徴Ｂを有する細胞を含む第２の群を含む異なる群に仕分けする
ことを含む該方法。
ＢＢＢ２． さらに、第１または第２の集団を商業的使用のために分配することを含むＢＢ１記載の方法。
ＢＢＢ３． プリセット標準が、特徴Ａまたは特徴Ｂを有する細胞の最小回収率または集団のうちの少なくとも１の最低純度であるＢＢＢ１記載の方法。
ＢＢＢ４． さらに、該複数の統合フローサイトメトリー作業を平行して行うことを含むＢＢＢ１記載の方法。
ＣＣＣ．ビジネス方法
ＣＣＣ１． その中で細胞を有する精子の試料を取り扱うことを含むビジネスを行う方法であって：
精子の供給を得；
機器を用いて複数の統合フローサイトメトリー作業を行い、ここに該作業は：（ａ）該精子の供給を受容し；ついで（ｂ）該供給の第１の部分からの該細胞を、特徴Ａを有する細胞を含む第１の集団および特徴Ｂを有する細胞を含む第２の集団を含む異なる集団へ仕分けし、ついで、該供給の第２の部分からの該細胞を、特徴Ａを有する細胞を含む第１の集団および特徴Ｂを有する細胞を含む第２の集団を含む異なる集団へ仕分けし；ついで
第１の部分の集団の１を第２の部分の集団の１と混合して、混合した集団を得る
ことを含む該方法。
ＣＣＣ２． 第１の部分の第１の集団が許容し得ない純度を有し、第２の部分の第１の集団が許容し得る純度を有し、および、混合した集団が許容し得る純度を有するＣＣＣ１記載の方法。
ＤＤＤ．液滴干渉仕分けＷ／落射照明
ＤＤＤ１． 染色体ＤＮＡ特徴に従って精子細胞を仕分けするための液滴干渉システムであって：
該細胞を第１の位置に送達し、および、第２の位置で液滴干渉流体流れからの液滴によって当てられるべき第１の流れの選択した流れセグメントを引き起こし、それによって選択したセグメントおよびそれに含まれる細胞を流体流れから分離するためのフローサイトメトリー装置、ここに該フローサイトメトリー装置は該ＤＮＡ特徴に従って細胞を分類し、および、流れセグメントに含まれる細胞の分類に従って流れセグメントを仕分けするのに作動可能であり、
フォーカシングレンズを含む落射照明型光学装置システムを含む該フローサイトメトリー、ここに該光学装置システムは、該細胞がビームを通過するように、該フォーカシングレンズを通ったレーザービームを該第１の位置において流体流れを交差するビーム軸に沿って前方方向に向けるのに作動可能であり、該ビーム軸に沿って向けられた細胞からの電磁的放射の放射を後方方向に生じる
を含む該システム。
ＤＤＤ２． 該光学装置システムが、さらに、該放射のうちの少なくとも幾つかを検出し、および、それを該ＤＮＡ特徴を示す電気シグナルに変換するのに作動可能な該フォーカシングレンズの背後の該ビーム軸上のフォトディテクターを含むＤＤＤ１記載のシステム。
ＤＤＤ３． 細胞が精子細胞であって、ＤＮＡ特徴が精子細胞の性染色体内容物を含むＤＤＤ１記載のシステム。
ＤＤＤ４． 該ビームが該第１の位置における流体流れ上のスポットとして該光学装置システムによってフォーカスされ、該スポットが流体流れの流れの方向に対して一般的に右角度で伸長する長軸に沿った長さおよび流体流れの流れの方向に対して一般的に平行に伸長する短軸に沿った幅を有し、該幅が当該ビームスポットを通過する精子細胞の頭部の長さよりも小さいＤＤＤ３記載のシステム。
ＤＤＤ５． 該精子細胞の頭部が流れの流れの方向で長さを有するＤＮＡ領域を含み、および、該ビームスポットの幅が該ＤＮＡ領域の長さよりも小さいＤＤＤ４記載のシステム。
ＤＤＤ６． 該フローサイトメトリー装置が、該ビームを通過する前に粒子を所望の方向に向ける傾向の力がそれに働くように形成された内部表面を有するノズルを含むＤＤＤ１記載のシステム。
ＤＤＤ７． 該ノズルがノズルの縦方向の軸の回りに回転可能であり、該所望の細胞方向をビーム軸に対して調整するＤＤＤ６記載のシステム。
ＤＤＤ８． 該フローサイトメトリー装置が、複数の流体流れを同時に分析するのに作動可能な複数のフローサイトメトリーユニットを含み、各フローサイトメトリーユニットが該落射照明型光学装置システムを含むＤＤＤ１記載のシステム。
ＤＤＤ９． 該光学装置システムが、該放射を検出するための１のみのフォトディテクターを含むＤＤＤ１記載のシステム。
ＤＤＤ１０． 該フローサイトメトリー装置が、ノズルオリフィスを有するノズル、および、通って該流体流れが該第１の位置に送達されるオリフィスから伸長するキャピラリー管を含むＤＤＤ１記載のシステム。
ＤＤＤ１１． 該第１の位置が、該キャピラリー管の内側に存在するＤＤＤ１０記載のシステム。
ＤＤＤ１２． 該光学装置システムが、管を通って流れる流れにビームを伝達するために、該キャピラリー管に光学的に結合されているＤＤＤ１１記載のシステム。
Ａ’．低温保存
ａ．（凍結保護物質添加後の冷却）
Ａ１’． ある量の精子細胞に凍結保護物質を添加し；
該量の精子細胞および該凍結保護物質を約０〜８℃の範囲の保持温度に冷却し；
該精子細胞および該凍結保護物質を実質的に該保持温度にて６０分間未満の期間維持し；次いで
該量の精子細胞を−４０℃の温度に過冷却する
工程を含む精子細胞を凍結保存する方法。
Ａ２’．該保持温度が、約２〜６℃の範囲にあるクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３’．該保持温度が、約４〜５℃の範囲にあるクレームＡ１’記載の方法。
Ａ４’．凍結保護物質を添加する工程が、グリセロールの添加を含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ５’．凍結保護物質を添加する工程が、約６％のグリセロール（ｖ／ｖ）の添加を含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ６’．該保持期間が、約４０分未満であるクレームＡ１’記載の方法。
Ａ７’．該保持期間が、約３０分であるクレームＡ１’記載の方法。
Ａ８’．冷却工程が、実質的に一定の冷却速度で該量の精子を冷却することを含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ９’．該量の精子細胞が、それ未満で精子細胞が低温衝撃からの損傷に付されるガラス転移温度を超える温度から保持温度まで約９０分間に冷却されるように冷却速度が選択されるクレームＡ８’記載の方法。
Ａ１０’．実質的に一定の冷却速度が、毎分約０．１〜０．３℃の範囲にあるクレームＡ８’記載の方法。
Ａ１１’．実質的に一定の冷却速度が、毎分約０．１５〜０．２５℃の範囲にあるクレームＡ８’記載の方法。
Ａ１２’．該保持期間が、約４０分未満の長さであるクレームＡ１１’記載の方法。
Ａ１３’．冷却工程が、プログラムされた速度で精子細胞を冷却するようなプログラム可能な冷凍装置を用いて行なわれるクレームＡ１’記載の方法。
Ａ１４’．該保持期間が４０分未満の長さであるクレームＡ１３’記載の方法。
Ａ１５’．プログラムされた冷却速度が、毎分約０．２℃の一定の冷却速度よりなるクレームＡ１４’記載の方法。
Ａ１６’．該量の精子を過冷却する工程が、第１の速度にて精子細胞を氷晶形成および浸透圧の変化が精子細胞を損傷する臨界温度ゾーンに接近した温度に冷却し、次いで、該第１の冷却速度より速い第２の冷却速度にて精子を約−３０℃未満である温度に冷却することを含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ１７’．該第１の冷却速度が、毎分約１〜５℃の範囲にあるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ１８’．該第１の冷却速度が、毎分約２〜４℃の範囲にあるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ１９’．該第１の冷却速度が毎分約３℃であるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ２０’．該第２の冷却速度が、毎分約８〜１２℃の範囲にあるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ２１’．該第２の冷却速度が、毎分約１０℃であるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ２２’．精子細胞が、該第１の冷却速度で約−１５℃の温度に冷却されるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ２３’．精子細胞が、該第２の冷却速度で約−１５℃から約−８０℃の温度に冷却されるクレームＡ２２’記載の方法。
Ａ２４’．精子細胞が、該第１の冷却速度で約−１８℃の温度に冷却されるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ２５’．精子細胞が、該第２の冷却速度で約−１８℃から約−８０℃の温度に冷却されるクレームＡ２４’記載の方法。
Ａ２６’．精子細胞が、プログラム可能な冷凍装置中で該第１および第２の速度にて冷却されるクレームＡ１６’記載の方法。
Ａ２７’．ある量の精子細胞に凍結保護物質を添加する工程が、シース流体に凍結保護物質を添加し、次いで、精子細胞を分析するフローサイトメーター中の該シース流体を用いることを含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ２８’．該フローサイトメーターを用いて、該精子細胞を所望の特性を有する精子細胞の集団に仕分けし、該量の精子細胞を得る工程をさらに含むクレームＡ２７’記載の方法。
Ａ２９’．該量の精子を冷却し、該精子細胞を保持温度に維持し、次いで該量の精子細胞を過冷却する工程のすべてを２２０分間未満で完了するクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３０’．該量の精子を冷却し、該精子細胞を保持温度に維持し、次いで該量の精子細胞を過冷却する工程のすべてを約１９０分間未満で完了するクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３１’．該量の精子を冷却し、該精子細胞を保持温度に維持し、次いで該量の精子細胞を過冷却する工程のすべてを約１５０分間未満で完了するクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３２’．凍結保護物質が該量の精子細胞に添加された後に人工授精ストローに該量の精子細胞を負荷する工程をさらに含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３３’．フローサイトメーターから５００×１０６個を超える精子細胞を含む精子細胞の仕分けされた集団を得て、それにより第１の量の精子細胞を含む複数の量の精子細胞を得、人工授精ストローに該複数の量の各精子細胞を負荷し、次いで、バッチ処理にて該複数の量の各精子細胞に冷却、維持および過冷却の工程を行い、凍結保存された精子細胞を含む人工授精ストローのバッチを得る工程をさらに含む、該量の精子細胞が該第１の量の精子細胞を構成するクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３４’．精子細胞の該仕分けされた集団が、８００×１０６個を超える精子細胞を含むクレームＡ３３’記載の方法。
Ａ３５’．該方法の工程が、約２４０分未満に完了するクレームＡ３３’記載の方法。
Ａ３６’．該方法の工程が、約２１０分未満に完了するクレームＡ３３’記載の方法。
Ａ３７’．該方法の工程が、約１７０分未満に完了するクレームＡ３３’記載の方法。
Ａ３８’．冷却工程前に該量の精子細胞をＤＮＡ選択的蛍光色素で染色する工程をさらに含むクレームＡ１’記載の方法。
Ａ３９’．該ＤＮＡ選択的色素が、Hoechst３３３４２を含むクレームＡ３８’記載の方法。
Ａ４０’．該量の精子を染色する該工程が、４０℃を超える温度でHoechst３３３４２を含む溶液中で該量の精子細胞をある期間インキュベートする工程を含むクレームＡ３９’記載の方法。
ｂ． 冷温度仕分け
Ａ４１’．ある量の精子細胞を約０〜８℃の範囲の保持温度に冷却し；
凍結保護物質を該量の精子細胞に添加し；次いで
該精子細胞および該凍結保護物質を実質的に該保持温度に６０分未満の期間維持する
工程を含む精子細胞を凍結保存する方法。
Ａ４２’．該期間が、約３０分〜６０分未満の範囲にあるクレームＡ４１’記載の方法。
Ａ４３’．凍結保護物質を添加する工程が、グリセロールの添加を含むクレームＡ４１’記載の方法。
Ａ４４’．凍結保護物質を添加する工程が、約７％のグリセロール（ｖ／ｖ）の添加を含むクレームＡ４１’記載の方法。
Ｂ’．バッフルを備えたノズル
Ｂ１’．流体流れ中の粒子を分析するためのフローサイトメトリー装置に用いるノズルであって、該流体流れが、該粒子を含む中核流れを囲むシース流を含み、ノズルが、
該流体流れに対して流れ経路を規定する内面、およびノズルからの流体流れの出口用のオリフィスを有するノズル；ならびに
流体流れが該流れ経路に沿って移動するように、流体流れを偏向させるための該オリフィスから上流の該流れ経路に配置したノズル内のバッフルを含み、
ノズルのバッフルおよび内面が、粒子がオリフィスを出るように、所望の配向に粒子を指向するように構成される該ノズル。
Ｂ２’．該バッフルが、該中核流れをノズルの中央の縦軸から離れて、ノズルの該内面に向けて偏向させるように設定されるクレームＢ１’記載のノズル。
Ｂ３’．該ノズルが、該バッフルの上流の第１の断面フロー領域およびバッフルでの該第１の断面フロー領域とは異なる第２の断面フロー領域を有するクレームＢ１’記載のノズル。
Ｂ４’．第２の断面フロー領域が、第１の断面フロー領域より小さいクレームＢ３’記載のノズル。
Ｂ５’．第１および第２の断面フロー領域が、異なる形状を有するクレームＢ３’記載のノズル。
Ｂ６’．該第２の断面フロー領域が、ほぼ半円筒状であるクレームＢ５’記載のノズル。
Ｂ７’．ノズルの該内面が、ノズルオリフィスに向けて下流方向に流体流れの速度を徐々に加速するための該バッフルから下流の少なくとも２つの軸方向のテーパー領域を規定するように成形されたクレームＢ１’記載のノズル。
Ｂ８’．該バッフルが、少なくとも１つの該少なくとも２つの軸方向のテーパー領域を規定するノズルの該内面の一部分の方向に該中核流れを偏向させるように設定されたクレームＢ７’記載のノズル。
Ｂ９’．該少なくとも２つの軸方向のテーパー領域が、粒子を該所望の配向にする傾向にある該流体流れにねじれ力を適用するための異なった方向に配向されたほぼ楕円の断面形状を有するクレームＢ８’記載のノズル。
Ｂ１０’．該少なくとも２つの領域の一方のほぼ楕円の断面形状が、該少なくとも２つの領域の他方のほぼ楕円の断面形状に対し約９０度で配向されるクレームＢ９’記載のノズル。
Ｂ１１’．非反射コーティングをその上に持つ外面を有するクレームＢ１’記載のノズル。
Ｂ１２’．上方軌道に沿って該流体流れを導くための上方に示す位置にて該ノズルを取り付けるためのマウントをさらに含むクレームＢ１’記載のノズル。
Ｂ１３’．ノズルが、ノズルの縦軸について該マウント上で回転可能であるクレームＢ１３’記載のノズル。
Ｂ１４’．該バッフルが、該流体流れを偏向させるためのバッフル部材および該ノズル中の固定位置で該バッフル部材を保持するためのホルダーを含むクレームＢ１’記載のノズル。
Ｂ１５’．該バッフル部材が、バッフルプレートを含むクレームＢ１４’記載のノズル。
Ｂ１６’．該バッフルプレートが、該流体流れに対してほぼ横軸に伸びる第１の脚、および該流体流れの方向にほぼ伸びる第２の脚を有するクレームＢ１５’記載のノズル。
Ｂ１７’．該ホルダーが、該バッフルプレートを保持し、該ノズル内に位置したほぼ円筒胴を含むクレームＢ１５’記載のノズル。
Ｂ１８’．ノズルの該内面が、該バッフルから下流のほぼ楕円の断面の領域を有し、かつバッフル部材の該第１および第２の脚が、該ほぼ楕円の断面の主軸と実質的に平行であるラインに沿って交差するクレームＢ１６’記載のノズル。
Ｂ１９’．ノズルの該内面が、該バッフルから下流のほぼ楕円の断面の領域を有し、かつバッフル部材の該第１および第２の脚が、該ほぼ楕円の断面の主軸と実質的に垂直であるラインに沿って交差するクレームＢ１６’記載のノズル。
Ｂ２０’．バッフルプレートが、ノズルの縦軸にほぼ垂直であるクレームＢ１５’記載のノズル。
Ｂ２１’．バッフルプレートが、半円形を有するクレームＢ２０’記載のノズル。
Ｂ２２’．バッフルが、半楕円形を有するクレームＢ２０’記載のノズル。
Ｂ２３’．ノズルの内面が、ショルダーを規定するように成形され、ホルダーが、所望の位置でバッフルプレートを保持するようにそのショルダーに対してバッフルプレートを押すことができるｏ−リングシールを含むクレームＢ２０’記載のノズル。
Ｂ２４’．バッフルホルダーが、バッフルプレートがノズルの縦軸と交差する位置でバッフルプレートを保持するクレームＢ２０’記載の方法。
Ｂ２５’．該粒子が、精子細胞を含むクレームＢ１’記載のノズル。
Ｃ’．バッフルを備えたノズル（方法）
Ｃ１’． 該粒子を含む試料流体の中核流れおよび中核流れを囲むシース流体のシース流を、ノズルの上流部分から、ノズルの下流端のオリフィスにほぼ先細になる内面を有するノズルを通って流れさせ；次いで
ノズルを通って流れるように中核流れを偏向させて、中核流れ中の粒子を所望の配向とみなされる傾向を有する流体力学的な力に付すことを特徴とする
フローサイトメトリー装置における粒子を配向させる方法。
Ｃ２’．ノズルが縦軸を有し、中核流れを偏向させる工程が、縦軸から離れて該内面に偏向させることを特徴とするクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ３’．ノズルが縦軸を有し、中核流れの経路を偏向させる工程が、中核流れを縦軸とほぼ一致する経路から偏向された経路に偏向させ、少なくとも１つの部分の偏向された経路がノズルの縦軸からズレているクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ４’．さらに縦軸からズレている位置にて中核流れをシース流に導入することを特徴とする、ノズルが縦軸を有するクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ５’．偏向工程が、バッフルを用いて中核流れを偏向させることを含むクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ６’．偏向工程が、バッフルを用いて中核流れを偏向させ、バッフルホルダーを用いてノズル内の位置にバッフルプレートを保持することを含むクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ７’．バッフルプレートが、ノズルの縦軸と交差するクレームＣ６’記載の方法。
Ｃ８’．ノズルが、粒子を流体力学的に偏向する力に付すための少なくとも１つのねじれゾーンを規定するように成形された内面を有するクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ９’．少なくとも１つのねじれゾーンが、ほぼ楕円の断面を有するノズルのテーパー領域を含むクレームＣ８’記載の方法。
Ｃ１０’．該内面が、複数のねじれゾーンを規定するように成形されたクレームＣ８’記載の方法。
Ｃ１１’．該複数の各ねじれゾーンが、ほぼ楕円の断面を有するノズルのテーパー領域を含むクレームＣ１０’記載の方法。
Ｃ１２’．複数のねじれゾーンの第一についてのほぼ楕円の断面が、複数のねじれゾーンの第２についてほぼ楕円の断面の異なる方向に配向されたクレームＣ１１’記載の方法。
Ｃ１３’．さらに、流体流れを第１の断面フロー領域、次いで、第１の断面フロー領域から下流の第２の断面フロー領域を通って流れさせる工程を含み、第１および第２の断面フロー領域は異なった形状を有する、中核流れを偏向させる工程がバッフルを用いて中核流れを偏向させるクレームＣ１’記載の方法。
Ｃ１４’．第２の断面フロー領域が第１の断面フロー領域より小さいクレームＣ１５’記載の方法。
Ｄ’．非対称注射針を備えたノズル（装置）
Ｄ１’．流体流れ中の粒子を分析するためのフローサイトメーターにおいて用いるノズルシステムであって、該流体流れが、該粒子を含む中核流れを囲むシース流を含み、
縦軸を有するノズル、該流体流れについて流れ経路を規定する内面、およびノズルからの流体流れの流れ経路の出口用の下流端のオリフィス、
該内面が、流体流れがねじれゾーンを通ってオリフィスの方向へ流れるように、所望の配向に該粒子を配向させるためのほぼ楕円の断面を有する軸方向のテーパー領域を含む少なくとも１つのねじれゾーンを規定するように成形され；ならびに
粒子源からノズルへの導管、該導管は、該中核流れをノズルの縦軸に関してズレている位置にてノズルに導入するように配置されることを含む該ノズルシステム。
Ｄ２’．該位置が、少なくとも１つの該ねじれゾーンから上流であるクレームＤ１’記載のノズルシステム。
Ｄ３’．少なくとも１つの該ねじれゾーンが、第１のねじれを構成し、該ノズルが第２のねじれゾーンをさらに含むクレームＤ１’記載のノズルシステム。
Ｄ４’．該位置が、第１のねじれゾーンおよび少なくとも一部分の第２のねじれゾーンから上流であるクレームＤ３’記載のノズルシステム。
Ｄ５’．第２のねじれゾーンは、ほぼ楕円の断面を有するノズルの軸方向のテーパー領域を含むクレームＤ３’記載のノズルシステム。
Ｄ６’．第１のねじれゾーンのほぼ楕円の断面の主軸が、第２のねじれゾーンのほぼ楕円の断面の主軸とは異なった方向に配向されるクレームＤ５’記載のノズルシステム。
Ｄ７’．第１のねじれゾーンのほぼ楕円の断面が、第２のねじれゾーンのほぼ楕円の断面に関して約９０度の角度で配向されるクレームＤ６’記載のノズルシステム。
Ｄ８’．該位置が、第１のねじれゾーンおよび少なくとも一部分の第２のねじれゾーンから上流であるクレームＤ７’記載のノズルシステム。
Ｅ’．非対称試料導入（方法）
Ｅ１’． シース流体を、縦軸およびほぼ楕円の断面を有するノズルの軸方向のテーパー領域を含む少なくとも１つのねじれゾーンを有するノズルを通して流れさせ；次いで
少なくとも１つのねじれゾーンを通してシース流体流れおよび中核流体流れについて該縦軸からズレている位置にて該縦軸からシース流体の流れに粒子を含む中核流体流れを導入することを含むフローサイトメーターにおける粒子を配向させる方法。
Ｅ２’．少なくとも１つのねじれゾーンを通った流体流れを引き起こす工程が、中核流体を流れ経路に沿って流れさせ、該流れ経路の一部分が、ノズルの縦軸からオフセットされ、次いで該粒子が該オフセット部分の流れ経路に沿って移動する間、該粒子を該ねじれゾーンにより生成された流体力学的な配向力に付することを特徴とするクレームＥ１記載の方法。
Ｅ３’．少なくとも１つのねじれゾーンが第１のねじれゾーンを構成し、さらに、シース流体流れおよび中核流体流れが、粒子を所望の配向に配向されるための第２のねじれゾーンを通って流れさせる工程を含む該クレームＥ１記載の方法。
Ｅ４’．該第２のねじれゾーンが、ほぼ楕円の断面領域を有するノズルにおけるテーパー領域を含むクレームＥ３記載の方法。
Ｅ５’．第１のねじれゾーンのほぼ楕円の断面領域の主軸が、第２のねじれゾーンのほぼ楕円の断面領域の主軸とは異なった方向に配向されたクレームＥ４記載の方法。
Ｅ６’．第１のねじれゾーンのほぼ楕円の断面領域の主軸が、第２のねじれゾーンのほぼ楕円の断面領域の主軸に垂直であるクレームＥ４記載の方法。
Ｆ’．第２の遠心による仕分けされた精子の濃縮
Ｆ１’．雄性動物から精子細胞を採取し；
１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞の複数の集団の１つに精子細胞を仕分けし；
精子細胞の該複数の集団の１つから所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得、該量の精子細胞は、ある体積の集められた流体に含まれ；
該体積の集められた流体を第１の遠心プロセスに付して、精子細胞の第１のペレット、および第１のペレットを覆う上澄みを形成し；
上澄みから第１のペレットを分離し；
上澄みをさらなる遠心に付して、第１の遠心後に上澄みに残っていた精子細胞の第２のペレットを形成し；次いで
ある体積の再懸濁流体を第１および第２のペレットに添加して、所望のＤＮＡ特性を有する精子細胞の懸濁液を得、該体積の懸濁流体の量が、懸濁液中の精子細胞の所望の濃度を生じるように選択される工程を含む動物精子細胞の処理方法。
Ｆ２’．第１の遠心プロセスが、５５０〜８００ｇの範囲におけるｇ−力を生成するのに十分な速度で遠心することを含むクレームＦ１’記載の方法。
Ｆ３’．第１の遠心プロセスが、７〜１０分の範囲における期間該速度にて該体積の集めた流体を遠心することを含むクレームＦ２’記載の方法。
Ｆ４’．該１以上の特定のＤＮＡ特徴が、精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含有するかを含むクレームＦ１’記載の方法。
Ｆ５’．所望のＤＮＡ特徴を有する多量の精子細胞を得て、商品流通システムを通して動物の飼育者に該多量の精子細胞を流通させるクレームＦ１’記載の方法。
Ｇ’．低圧力での濾過
Ｇ１：雄性動物から精子細胞を採取し；
精子細胞を仕分けして、所望の特徴を有するある量の精子細胞を得、該量の仕分けされた精子細胞が、その中に第１の濃度の精子細胞を有する第１の体積の流体中に含まれ；次いで
該精子細胞の濃度が、該第１の濃度より高い第２の濃度に増加される濃縮工程に該精子細胞が付される工程を含み、
ここに、該濃縮工程が、約２０インチ水銀未満の第１のフィルターを横切る異なる圧力にて第１のフィルターを通して第１の体積の流体の少なくとも一部分を流すことを含み、該フィルターがそれを通る該精子細胞の通過を抑制するのに十分小さいフィルター孔を有し、該精子細胞を含む第２の体積の未濾過流体を保持することを含む動物精子細胞の処理方法。
Ｇ２’．該流れの間フィルターを横切る異なる圧力が、実質的に一定であるクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ３’．ある期間にフィルターを横切る異なる圧力を断続的に低下させ、次いで、実質的に圧力差を回復する工程をさらに含むクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ４’．圧力差を低下させる工程が、異なる圧力を約０に低下させる工程を含むクレームＧ３’記載の方法。
Ｇ５’．フィルター孔が、約０．２〜１．０ミクロンの範囲のサイズを有するクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ６’．該第１の体積の流体の約８０％〜９０％が該第１のフィルターを通って流れるクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ７’．該第２の体積の未濾過流体が、該第１のフィルター上の精子細胞の固化（caking）を防止するのに十分であるクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ８’．該精子細胞の通過をそれを通って抑制するのに十分に小さなフィルター孔を有する第２のフィルターを通して第２の体積の未濾過流体の少なくとも一部分を流し、該精子細胞を含む第３の体積の未濾過流体を保持し、次いで、再懸濁流体で該第２のフィルターを洗い流して、該第３の体積に加えるための第２のフィルターから精子細胞を取り出して、該第２の濃度を達成することをさらに含むクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ９’．第２の体積の未濾過流体流れの約８０％が、該第２のフィルターを通して流れるクレームＧ８’記載の方法。
Ｇ１０’．該第３の体積の未濾過流体が、該第２のフィルター上の精子細胞の固化を防止するのに十分であるクレームＧ８’記載の方法。
Ｇ１１’．該第２のフィルターが、約５０〜５００ミクロンの範囲の厚みを有する薄いフィルターであるクレームＧ８’記載の方法。
Ｇ１２’．該第２のフィルターが、約７５〜２５０ミクロンの範囲の厚みを有する薄いフィルターであるクレームＧ８’記載の方法。
Ｇ１３’．該第２のフィルターが、約１００〜１５０ミクロンの範囲の厚みを有する薄いフィルターであるクレームＧ８’記載の方法。
Ｇ１４’．該第１のフィルターが、約５０〜５００ミクロンの範囲の厚みを有する薄いフィルターであるクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ１５’．該第１のフィルターが、約７５〜２５０ミクロンの範囲の厚みを有する薄いフィルターであるクレームＧ１’記載の方法。
Ｇ１６’．該第１のフィルターが、約１００〜１５０ミクロンの範囲の厚みを有する薄いフィルターであるクレームＧ１’記載の方法。
Ｈ’．全体的な温度調節（高温染色）
Ｈ１’．雄性動物から精子細胞を含む精液試料を採取し；
精子処理施設に精液試料を輸送し；
精液に初期の品質管理チェックを行い；
該精子細胞をＤＮＡ選択的蛍光色素に曝露することにより精子細胞中のＤＮＡに選択的に結合するＤＮＡ選択的蛍光色素で該精液試料中の精子細胞を染色して、染色用混合物を形成し、次いで染色用混合物を、少なくとも約４０℃の温度に付し；
フローサイトメーターを用いて、特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞を仕分けし；
ある体積の流体中に懸濁した所望のＤＮＡ特性を有するある量の精子細胞を得；
濃縮工程を行なうことにより該懸濁液中の精子細胞の濃度を調節して、所望の濃度を達成し；次いで
該量の精子細胞を過冷却する
工程を含む精子細胞の処理方法。
Ｈ２’．精子細胞が採取された時点から染色工程の開始まで精子細胞の温度を約２０〜３７℃の範囲の温度に維持し、次いでその時間の間に温度変動から精子細胞を隔離することをさらに含むクレームＨ１’記載の方法。
Ｈ３’．精子細胞を隔離する工程が、処理施設への輸送の間に精液試料を断熱容器中に保つことを含むクレームＨ２’記載の方法。
Ｈ４’．該フローサイトメーターへ導入される前に、約１８〜２５℃の範囲の温度を有する環境下に染色された精子細胞を置き、仕分け工程を始める前の染色工程の間に精子細胞をそれらが得た温度から冷却する工程をさらに含むクレームＨ１’記載の方法。
Ｈ５’．過冷却する工程が、精子細胞を２０℃を超える温度から約０〜８℃の範囲の温度に冷却して、精子細胞の温度が２０℃未満に冷却される前に、該精子細胞に蛋白質源および凍結保護物質を添加することを含むクレームＨ１’記載の方法。
Ｈ６’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、
（ａ）約０〜８℃の範囲の保持温度に精子細胞を冷却し；（ｂ）約６０分未満の期間精子を該保持温度に維持して、精子細胞が凍結保護物質と実質的に平衡するのを可能にし；（ｃ）第１の冷却速度にて精子を氷晶形成および浸透圧における変化が精子細胞を損傷する臨界温度ゾーンに接近する温度に冷却し；次いで（ｄ）該第１の冷却速度より速い第２の冷却速度で該臨界温度ゾーンを通して精子細胞を冷却するクレームＨ５’記載の方法。
Ｈ７’．該第１の冷却速度にて精子細胞を該保持温度から約−１５℃に冷却することをさらに含むクレームＨ６’記載の方法。
Ｈ８’．該第２の冷却速度にて精子細胞を約−１８℃から少なくとも約−３０℃に冷却することをさらに含むクレームＨ７’記載の方法。
Ｈ９’．該第１の冷却速度にて精子細胞を該保持温度から約−１８℃に冷却することをさらに含むクレームＨ６’記載の方法。
Ｈ１０’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、毎分約０．１〜０．３℃の範囲の冷却速度にて精子細胞を該保持温度に冷却することをさらに含むクレームＨ６’記載の方法。
Ｈ１１’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、毎分約１〜５℃の該第１の速度にて精子細胞を該保持温度から約−１５℃の温度に冷却することをさらに含むクレームＨ１０’記載の方法。
Ｈ１２’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、毎分約８〜１２℃の該第２の速度にて精子細胞を約−１８℃から少なくとも約−３０℃の温度に冷却することをさらに含むクレームＨ６’記載の方法。
Ｈ１３’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、毎分約１〜５℃の該第１の速度にて精子細胞を該保持温度から少なくとも約−１５℃の温度に冷却することをさらに含むクレームＨ１２’記載の方法。
Ｈ１４’．精子細胞が、約３０分の期間該保持温度に維持されるクレームＨ６’記載の方法。
Ｈ１５’．染色用混合物が酸化防止物質をさらに含むクレームＨ１’〜Ｈ１４のいずれか１記載の方法。
Ｈ１６’．酸化防止物質が、ピルビン酸塩、ビタミンＫ、リポ酸およびそれらの組合せよりなる群から選択されるクレームＨ１５’記載の方法。
Ｈ１７’．染色された精子細胞を少なくとも約３７℃の温度を有する環境下にそれらがフローサイトメーターに導入されるまで置くことを含むクレームＨ１’およびＨ５’〜Ｈ１６’のいずれか１記載の方法。
Ｈ１８’．染色された精子細胞を少なくとも約４０℃の温度を有する環境下にそれらがフローサイトメーターに導入されるまで置くことを含むクレームＨ１’およびＨ５’〜Ｈ１６’のいずれか１記載の方法。
Ｈ１９’．ある量の精子細胞を得る工程が、毎秒少なくとも５，０００個の精子細胞の速度で該所望のＤＮＡ特徴を有する生精子細胞の集団を得ること含むクレームＨ１’記載の方法。
Ｈ２０’．該集団の純度が、少なくとも８５％であるクレームＨ１９’記載の方法。
Ｊ’．全体的な温度調節（高温度染色なし）
Ｊ１’．雄性動物から精子細胞を含む精液試料を採取し；
精子処理施設に精液試料を輸送し；
精液試料に初期の品質管理チェックを行い；
ＤＮＡ選択的蛍光色素で該精液試料中の精子細胞を染色し；
精子細胞をフローサイトメーターで仕分けして、所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の１以上の集団を得；
流体中に懸濁された所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得；
該量の精子細胞の濃度を調整して、流体懸濁液中の所望のＤＮＡ特徴を有する所望の濃度の精子細胞を得；
該量の精子細胞が、それ未満で精子細胞が低温衝撃からの損害に付されるガラス転移温度より高い温度を有する間に該所望の特徴を有するある量の精子細胞に凍結保護物質を添加し、；
該量の該精子細胞および凍結保護物質を該ガラス転移温度から約０〜８℃の範囲の保持温度に冷却し；
該量の該精子細胞および凍結保護物質を約０〜８℃の温度範囲に６０分未満の期間維持し；次いで
該量の精子を−４０℃未満の温度に過冷却する
工程を含む精子細胞の処理方法。
Ｊ２’．該量の精子細胞が約２０℃を超える温度を有する間に、該凍結保護物質が添加されるクレームＪ１’記載の方法。
Ｊ３’．染色された精子細胞が、それらがフローサイトメーター中で仕分けされるまで、約２０〜２５℃の範囲の温度を有する環境下に置かれるクレームＪ１’記載の方法。
Ｊ４’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、第１の冷却速度にて該量の精子を該保持温度から、氷晶形成および浸透圧における変化が精子細胞を損傷する臨界温度ゾーンに接近する温度に冷却し、次いで、第１の冷却速度より速い第２の冷却速度にて該臨界温度ゾーンを通して該量の精子細胞を冷却することをさらに含むクレームＪ１’記載の方法。
Ｊ５’．該量の精子細胞を維持する工程が、約４０分未満の期間該保持温度に該量の精子細胞を保つことを含むクレームＪ１’記載の方法。
Ｊ６’．該量の精子細胞を維持する工程が、約３０分の期間該保持温度に該量の精子細胞を保つことを含むクレームＪ１’記載の方法。
Ｊ７’．染色工程が、さらに精子細胞に酸化防止物質を添加することを含むクレームＪ１’〜Ｊ６’のいずれか１記載の方法。
Ｊ８’．酸化防止物質が、ピルビン酸塩、ビタミンＫ、リポ酸およびそれらの組合せよりなる群から選択されるクレームＪ７’記載の方法。
Ｊ９’．所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得る工程が、毎秒少なくとも５，０００個の精子細胞の速度で該生精子細胞の集団を得ること含むクレームＪ１’記載の方法。
Ｊ１０’．精子細胞の該集団の純度が、少なくとも８５％であるクレームＪ９’記載の方法。
Ｋ’．全体的な温度調節（冷染色）
Ｋ１’． 雄性動物から精子細胞を含む精液試料を採取し；
精子処理施設に精液試料を輸送し；
精液試料に初期の品質管理チェックを行い；
精子細胞のいずれかの実質的な希釈前に約０〜８℃の範囲の温度に精子細胞を冷却し；
精子細胞およびＤＮＡ選択的色素を含有する溶液を含む混合物を形成し、次いで、混合物を０〜８℃の範囲の温度に付して、精子細胞を染色し；
精子細胞をフローサイトメーターで仕分けして、所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の１以上の集団を得；
流体中に懸濁された所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得；
該量の精子細胞の濃度を調整して、流体懸濁液中の所望のＤＮＡ特徴を有する所望の濃度の精子細胞を得；
凍結保護物質を該量の精子細胞に添加し；
該量の精子細胞および該凍結保護物質を約０〜８℃の範囲の保持温度に約３０分間〜３時間の範囲の期間保持し；次いで
４０°未満の温度に該量の精子細胞を過冷却する
工程を含む精子細胞の処理方法。
Ｋ２’．実質的に処理中のいずれの時点でも細胞を温めるのを回避する工程をさらに含むクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ３’．精子細胞を０〜８°の範囲の温度に冷却する工程が、実質的に予め冷却された精子細胞と同一温度である水浴に精子細胞を保持する容器に位置させ、約８℃未満の温度を有する環境に水浴を位置させる含むクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ４’．冷却工程が、さらにそれらが冷却される精子細胞の温度をモニターし、精子細胞が約１０℃未満の温度に冷却した後、水浴に氷を添加することを含むクレームＫ３’記載の方法。
Ｋ５’．該保持期間が、約１〜２時間の範囲内にあるクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ６’．該保持期間が、約９０分の範囲内にあるクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ７’．該保持期間が、約３０分〜６０分未満の範囲内にあるクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ８’．プログラム可能な冷凍装置を用いて、第１の冷却速度にて該量の精子を該保持温度から氷晶形成および浸透圧における変化が精子細胞を損傷する臨界温度ゾーンに接近する温度に冷却し、次いで、第１の冷却速度より速い第２の冷却速度にて該臨界温度ゾーンを通して該量の精子細胞を冷却することを含むクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ９’．凍結保護物質の添加工程が、グリセロールの添加を含むクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ１０’．凍結保護物質の添加工程が、７％のグリセロール（ｖ／ｖ）の添加を含むクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ１１’．所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得る工程が、毎秒少なくとも５，０００個の精子細胞の速度で該生精子細胞の集団を得ること含むクレームＫ１’記載の方法。
Ｋ１２’．精子細胞の該集団の純度が、少なくとも８５％であるクレームＫ１１’記載の方法。
Ｌ’．回収システム（装置）
Ｌ１’．水平コンポーネントを含む軌道に沿って移動する液滴の流れを生成する液滴仕分けフローサイトメーターにより仕分けされた液滴の流れを集める回収システムであって、液滴が該軌道に沿って移動するような該流れ中の液滴を妨害するための妨害装置および該妨害された液滴を集めるように配置された回収容器を含む該回収システム。
Ｌ２’．妨害装置が、該液滴が衝撃を与えるのに適応した該軌道を横切って配置された衝撃表面を含むクレームＬ１’記載の回収システム。
Ｌ３’．衝撃表面が、該液滴が上方速度コンポーネントを有する位置にて該軌道を横切って配置されるクレームＬ２’記載の回収システム。
Ｌ４’．少なくともいくつかの液滴が粒子を含み、衝撃表面が衝撃表面での損傷に際しての該粒子に対する損傷を低下させる物質で覆われるクレームＬ２’記載の回収システム。
Ｌ５’．該物質が、卵黄、ウシ血清アルブミンおよびリン酸塩緩衝食塩水よりなる群から選択される１以上の物質を含むクレームＬ４’記載の回収システム。
Ｌ６’．該粒子が、精子細胞であるクレームＬ４’記載の回収システム。
Ｌ７’．該妨害装置が、回収容器に該妨害された液滴を導くために配置されたクレームＬ２’記載の回収システム。
Ｌ８’．妨害装置が、該液滴を該回収容器に至るまで導くための該衝撃表面下のガイドを含むクレームＬ７’記載の回収システム。
Ｌ９’．妨害装置が、該衝撃表面を規定し、該衝撃表面に対する衝撃用の中空の包囲に該軌道に沿って移動する液滴が入るためのエントリーウィンドウを有する該包囲を含むクレームＬ７’記載の回収システム。
Ｌ１０’．液滴の該流れが液滴の第１の流れを構成し、該妨害装置が第１の妨害装置を構成し、該回収容器が第１の回収容器を構成し、該サイトメーターが、該第１の軌道とは異なる該第２の軌道に沿って移動する液滴の第２の流れを生成し、さらに、該第２の軌道に沿って移動する液滴を妨害する第２の妨害装置ならびに第２の妨害装置によって妨害された液滴を集めるための第２の回収容器を含むクレームＬ１’記載の回収システム。
Ｌ１１’．該第１の妨害装置がそれを通って通過するように該第２の流れが適応されるウィンドウを有し、該第２の妨害装置が、該ウィンドウを通って通過する第２の流れにおける液滴を妨害するための該第１の妨害装置の後部に位置するクレームＬ１０’記載の回収システム。
Ｌ１２’．該第２の妨害装置が、第２の流れ中の該妨害された液滴を第２の回収容器に導くために配置されたクレームＬ１０’記載の回収システム。
Ｌ１３’．該液滴が粒子を含み、さらに衝撃に際して該粒子への損傷を低下させる妨害装置の衝撃表面を覆う物質を含むクレームＬ１’記載の回収システム。
Ｌ１４’．該粒子が、生精子細胞を含むクレームＬ１３’記載の回収システム。
Ｌ１５’．該物質が、卵黄、ウシ血清アルブミンおよびリン酸塩緩衝食塩水よりなる群から選択される物質を含むクレームＬ１３’記載の回収システム。
Ｌ１６’．妨害装置に液滴流れを指向させるように位置したフローサイトメーターと組み合わせたクレームＬ１’記載の回収システム。
Ｍ’．回収システム（方法）
Ｍ１’．水平コンポーネントを含む軌道に沿って移動する液滴の流れを生成する液滴仕分けフローサイトメーターによって仕分けされた液滴を集める方法であって、
液滴が該軌道に沿って移動するように該液滴を妨害し；次いで
第１の回収容器に該妨害された液滴を集める工程を含む該方法。
Ｍ２’．該集める工程が、該妨害された液滴を該第１の回収容器に導くことを含むクレームＭ１’記載の方法。
Ｍ３’．該妨害工程が、該液滴が上方速度コンポーネントを有する位置での該軌道を横切った衝撃表面を配置することを含むクレームＭ２’記載の方法。
Ｍ４’．該衝撃表面の位置を調節して、異なった液滴軌道を供することをさらに含むクレームＭ３’記載の方法。
Ｍ５’． 該フローサイトメーターが、第１および第２の各軌道に沿って移動する第１および第２の流れを生成し、各軌道が、水平コンポーネントを有し、さらに、液滴が該第２の軌道に沿って移動する該第２の流れにおける該液滴を妨害し、次いで、第２の回収容器に第２の流れの該妨害された液滴を集めることを含むクレームＭ１’記載の方法。
Ｍ６’．該第１および第２の軌道が、実質的に１平面に存在するクレームＭ５’記載の方法。
Ｍ７’．該第１の流れにおける液滴が、該液滴が上方速度コンポーネントを有する位置で該第１の軌道を横切って第１の衝撃表面を位置させることにより妨害され、該第２の流れの液滴が、該液滴が上方速度コンポーネントを有する位置で該第２の軌道を横切って第２の衝撃表面を位置させることにより妨害されるクレームＭ５’記載の方法。
Ｍ８’．該第２の衝撃表面が、該第１の衝撃表面とは異なる高さ（elevation）に位置するクレームＭ７’記載の方法。
Ｍ９’．該液滴が粒子を含み、該液滴を妨害する工程が、該液滴を妨害する妨害装置を用いることを含み、該妨害装置と該粒子に対する損傷を低下させる組成物とを接触させることをさらに含むクレームＭ１’記載の方法。
Ｍ１０’．該粒子が生精子細胞を含むクレームＭ９’記載の方法。
Ｍ１１’．該組成物が、卵黄、ウシ血清アルブミンおよびリン酸塩緩衝食塩水よりなる群から選択される物質を含むクレームＭ１０’記載の方法。
Ｍ１２’．該妨害装置と組成物とを接触させる工程が、組成物が妨害装置により吸着および／または付着されるのに十分である期間該組成物中の該妨害装置に浸すことを含むクレームＭ１０’記載の方法。
Ｍ１３’．該期間が、約３０〜９０分の範囲にあるクレームＭ１２’記載の方法。
Ｍ１４’．該期間が、約３０〜６０分の範囲にあるクレームＭ１３’記載の方法。
Ｍ１５’．該期間が、約６０分であるクレームＭ１４’記載の方法。
Ｍ１６’．該液滴を集める工程が、回収容器に該液滴を集め、さらに、回収容器と組成物とを接触させ、該粒子に対する損傷を低下させる工程を含むクレームＭ１０’〜Ｍ１５’のいずれか１記載の方法。
Ｍ１７’．回収容器と組成物とを接触させ、該粒子に対する損傷を低下させる工程が、回収容器と妨害装置を接触させるのに用いた同一組成物とを接触させることをさらに含むクレームＭ１６’記載の方法。
Ｍ１８’．回収容器と組成物とを接触させ、該粒子に対する損傷を低下させる工程が、組成物が妨害装置により吸着および／または付着されるのに十分である期間該組成物中の該妨害装置に浸すことを含むクレームＭ１６’記載の方法。
Ｍ１９’．該期間が、約３０〜９０分の範囲にあるクレームＭ１８’記載の方法。
Ｍ２０’．該期間が、約６０分であるクレームＭ１８’記載の方法。
Ｎ’．相乗的組合せ
ａ．マルチチャネルＦＣＭ（仕分け戦略有り）
Ｎａ１’． 各々が１以上のＤＮＡ特徴に基づいて精子細胞を仕分けするように作動可能である複数のフローサイトメトリーユニットに精子細胞を含む試料流体を送達し、次いで少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該ユニットを操作することを含むフローサイトメトリープロセスを用いて１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞を異なる集団の精子細胞に仕分けし；次いで
試料流体が、少なくとも１つの以下のもの：（１）所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の第１の仕分けされた集団の純度；および（２）第２の仕分けされた集団中の該所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の量の関数として１以上のフローサイトメトリーユニットに送達される速度を変更する
工程を含む動物の精子細胞を処理する方法。
Ｎａ２’．並列にて該フローサイトメトリーユニットを操作することをさらに含むクレームＮａ１’記載の方法。
Ｎａ３’．該１以上の特定のＤＮＡ特徴が、精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含有するかどうかを含むクレームＮａ１’記載の方法。
ｂ．デジタル処理でのマルチチャネルＦＣＭ
Ｎｂ１’．： 各々が１以上のＤＮＡ特徴に基づいて精子細胞を仕分けするように作動可能である複数のフローサイトメトリーユニットに精子細胞を含む試料流体を送達し、次いで少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該ユニットを操作することを含むフローサイトメトリープロセスを用いて１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞を異なる集団の精子細胞に仕分けし；次いで
１以上のアナログデジタル変換器を用いて各フローサイトメトリーユニットから時変アナログ出力を同調してサンプリングし、次いで該時変アナログ出力に対応するデジタル情報を含む出力を供し、ここに、該時変アナログ出力および対応するデジタル情報が、該特定のＤＮＡ特徴を示す工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｂ２’．該１以上の特定のＤＮＡ特徴が、精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含有するかを含むクレームＮｂ１’記載の方法。
ｃ．マルチチャネルＦＣＭ（ｗ／高温染色）
Ｎｃ１’．
精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含む染色用混合物を形成し、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；次いで、
各々が１以上のＤＮＡ特徴に基づいて精子細胞を仕分けするように作動可能である複数のフローサイトメトリーユニットに精子細胞を含む試料流体を送達し、次いで少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該ユニットを操作することを含むフローサイトメトリープロセスを用いて１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞を異なる集団の精子細胞に仕分けする工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｃ２’．色素が、ＵＶ励起または可視光線励起の色素であるクレームＮｃ１’記載の方法。
Ｎｃ３’．色素が、ビスベンズイミド、ＳＹＢＲ−１４ならびにそのコンジュゲート、アナログおよび誘導体よりなる群から選択されるクレームＮｃ２’記載の方法。
Ｎｃ４’．染色用混合物が、ＸおよびＹを担う精子細胞が蛍光に基づいて異なって仕分けできるように色素がＤＮＡに結合するのを可能にするのに十分な期間該温度に付されることを含むクレームＮｃ１’〜Ｎｃ３のいずれか１記載の方法。
Ｎｃ５’．期間が、約１〜１６０分の範囲にあるクレームＮｃ４’記載の方法。
Ｎｃ６’．染色用混合物がさらに酸化防止物質を含むクレームＮｃ１’〜Ｎｃ５’のいずれか１記載の方法。
Ｎｃ７’．１以上の該特徴が、精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含むかどうかを含むクレームＮｃ１’記載の方法。
ｄ．マルチチャネル（急速低温保存）
Ｎｄ１’． 各々が１以上のＤＮＡ特徴に基づいて精子細胞を仕分けするように作動可能である複数のフローサイトメトリーユニットに精子細胞を含む試料流体を送達し、次いで少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該ユニットを操作することを含むフローサイトメトリープロセスを用いて１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞を異なる集団の精子細胞に仕分けし；
精子細胞の仕分けされた集団の１以上から所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得；
凍結保護物質を該量の精子細胞に添加し；
該量の精子細胞および凍結保護物質を約０〜８℃の保持温度に冷却し；
該精子細胞および該凍結保護物質を実質的に該保持温度に６０分未満の期間維持し；次いで
該量の精子細胞を−４０℃の温度に過冷却する工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｄ２’．凍結保護物質を添加する工程が、グリセロールを添加することを含むクレームＮｄ１’記載の方法。
Ｎｄ３’．該１以上の特定のＤＮＡ特徴が、精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含むかどうかを含むクレームＮｄ１’記載の方法。
Ｎｄ４’．該量の精子細胞を該保持温度に冷却する工程が、該量の精子細胞が、それ未満で精子細胞が低温衝撃からの損傷に付されるガラス転移温度を超える温度から該保持温度まで約９０分間に冷却されるように冷却速度が選択されるクレームＮｄ１’記載の方法。
Ｎｄ５’．冷却速度が、毎分約０．１〜０．３℃の範囲にある実質的に一定の冷却速度であるクレームＮｄ４’記載の方法。
Ｎｄ６’．該量の精子を過冷却する工程が、氷晶形成および浸透圧の変化が精子細胞を損傷する臨界温度ゾーンに接近した温度まで第１の速度にて冷却し、次いで、該第１の冷却速度より速い第２の冷却速度にて精子を約−３０℃未満である温度まで冷却することを含むクレームＮｄ１’記載の方法。
Ｎｄ７’．精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付す工程をさらに含むＮｄ１’記載の方法。
ｅ．仕分け戦略（高温染色）
Ｎｅ１’． 精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
精子細胞を含有する該染色用混合物の流体流れを第１の位置に送達し、該流れを第２の位置にて液滴に壊し、該液滴が、各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第１の液滴、各々が所望しない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第２の液滴、ならびに各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞および所望でなはない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第３の液滴を含み；
該第２および第３の液滴から第１の液滴を仕分けし；
該第１の液滴を集めて、所望の性染色体を有する精子細胞の少なくとも１つの集団を供し；
所望の性染色体を有するある量の精子細胞を該少なくとも１つの集団中で同定し；次いで
該第１、第２および第３の液滴中の該所望の性染色体を有する精子細胞の総数に対し少なくとも１つの該集団の中で所望の性染色体を有すると同定されたある量の精子細胞の関数として該第１の位置に流体が送達される速度を変更する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｅ２’．精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
精子細胞を含有する該染色用混合物の流体流れを第１の位置に送達し、該流れを第２の位置にて液滴に壊し、該液滴が、各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第１の液滴、各々が所望しない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第２の液滴、ならびに各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞および所望でなはない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第３の液滴を含み；
該第２の液滴から第１の液滴および第３の液滴を仕分けし；
該第１および第３の液滴を集めて、所望の性染色体を有する精子細胞の少なくとも１つの集団を供し；
所望の性染色体を有するある量の精子細胞を該少なくとも１つの集団中で同定し；次いで
少なくとも１つの該集団の中で所望ではない性染色体を有すると同定された量の精子細胞の関数として該第１の位置に流体が送達される速度を変更する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
ｆ．高温染色（ｗ／急速低温保存）
Ｎｆ１’．精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
特定のＤＮＡ特徴に基づき該染色用混合物中の該精子細胞を仕分けし；
所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得；
該量の精子細胞に凍結保護物質を添加し；
該量の精子細胞および凍結保護物質を約０〜８℃の保持温度に冷却し；
該精子細胞および該凍結保護物質を実質的に保持温度に６０分未満の期間維持し；次いで
該量の精子細胞を−４０℃の温度に過冷却する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｆ２’．結保護物質を添加する工程が、グリセロールの添加を含むクレームＮｆ１記載の方法。
Ｎｆ３’．該特定のＤＮＡ特徴が、精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含有するかを含むクレームＮｆ１記載の方法。
Ｎｆ４’．該量の精子細胞を冷却する工程が、該量の精子細胞が約９０分間で約０〜８℃に冷却されるように選択された冷却速度を用いることを含むクレームＮｆ１記載の方法。
Ｎｆ５’．冷却速度が、毎分約０．１〜０．３℃の範囲にある実質的に一定の冷却速度であるクレームＮｄ４記載の方法。
Ｎｆ６’．該量の精子を過冷却する工程が、氷晶形成および浸透圧の変化が精子細胞を損傷する臨界温度ゾーンに接近した温度まで第１の速度にて精子細胞を冷却し、次いで、該第１の冷却速度より速い第２の冷却速度にて精子を約−３０℃未満である温度まで冷却することを含むクレームＮｆ１記載の方法。
ｇ．複数組合せ
Ｎｇ１’．（高温染色／マルチチャネル仕分け／急速低温保存）
精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
各々が１以上のＤＮＡ特徴に基づいて精子細胞を仕分けするように作動可能である複数のフローサイトメトリーユニットに精子細胞を含む試料流体を送達し、次いで少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該ユニットを操作することを含むフローサイトメトリープロセスを用いて１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき該染色用混合物中の精子細胞を異なる集団の精子細胞に仕分けし；
所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得；
該量の精子細胞に凍結保護物質を添加し；
該量の精子細胞および凍結保護物質を約０〜８℃の保持温度に冷却し；
該精子細胞および該凍結保護物質を実質的に保持温度に６０分未満の期間維持し；次いで
該量の精子細胞を−４０℃の温度に過冷却する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｇ２’．（高温染色／マルチチャネル仕分け／高純度仕分け戦略）
精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
精子細胞を含有する該染色用混合物の流体流れを複数の各フローサイトメトリーユニットに送達し、フローサイトメトリーを用いて各流体流れを液滴に壊し、該液滴が、各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第１の液滴、各々が所望しない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第２の液滴、ならびに各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞および所望でなはない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第３の液滴を含み；
少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該複数のフローサイトメトリーユニットを操作することを含む液滴仕分けフローサイトメトリープロセスを用いて該第２および第３の液滴から該第１の液滴を仕分けし；
該第１の液滴を集めて、所望の性染色体を有する精子細胞の少なくとも１つの集団を供し；
所望の性染色体を有するある量の精子細胞を該少なくとも１つの集団中に同定し；次いで
該第１、第２および第３の液滴中の該所望の性染色体を有する精子細胞の総数に対し少なくとも１つの該集団の中で所望の性染色体を有すると同定された量の精子細胞の関数として１以上のフローサイトメトリーユニットに流体が送達される速度を変更する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｇ３’．（高温染色／マルチチャネル仕分け／高回収仕分け戦略）
精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
精子細胞を含有する該染色用混合物の流体流れを複数の各フローサイトメトリーユニットにフローサイトメトリーユニットを用いて各流体流れを液滴に壊し、該液滴が、各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第１の液滴、各々が所望しない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第２の液滴、ならびに各々が所望の性染色体を有する１以上の精子細胞および所望でなはない性染色体を有する１以上の精子細胞を含む第３の液滴を含み；
少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、複数のフローサイトメトリーユニットを操作することを含む液滴仕分けフローサイトメトリープロセスを用いて該第２の液滴から該第１および第３の液滴を仕分けし該ユニットを操作し；
該第１および第３の液滴を集めて、所望の性染色体を有する精子細胞の少なくとも１つの集団を供し；
所望ではない性染色体を有するある量の精子細胞を該少なくとも１つの集団中に同定し；次いで
少なくとも１つの該集団の中で所望ではない性染色体を有すると同定された量の精子細胞の関数として１以上のフローサイトメトリーユニットに流体が送達される速度を変更する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｎｇ４’．（高温染色／マルチチャネル仕分け／仕分け戦略／急速低温保存）
精子細胞およびＤＮＡ選択的蛍光色素を含有する染色用混合物を形成し、次いで、染色用混合物を少なくとも約４０℃の温度に付し；
精子細胞を含有する該染色用混合物の流体流れを複数の各フローサイトメトリーユニットに送達し、フローサイトメトリーユニットを用いて、各流体流れを液滴に壊し、液滴に含まれた精子細胞の１以上の特定のＤＮＡ特徴により該液滴を仕分けして、少なくとも１つの以下のエレメント：（１）精子細胞の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対し１つのユニットの操作の評価を可能にするユニットから情報を受け取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該精子細胞を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含む統合プラットフォームを共有しつつ、該複数のフローサイトメトリーユニットを操作することを含む液滴仕分けフローサイトメトリー処理を用いて所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の１以上の集団を得；
少なくとも１つの以下のもの：（１）所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の該１以上の集団の純度；および（２）該液滴中に所望のＤＮＡ特徴を有する精子細胞の総数に対し精子細胞の該１以上の集団における所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞の関数として１以上のフローサイトメトリーユニットに流体を送達させる速度を変更し；
凍結保護物質を添加して、精子細胞の該１以上の集団から得たある量の精子細胞を保護し；
該量の精子細胞および該凍結保護物質を約０〜８℃の保持温度に冷却し；
該精子細胞および該凍結保護物質を実質的に該保持温度に６０分未満の期間維持し；次いで
該量の精子細胞を−４０℃の温度に過冷却する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｏ’．全体的なスケジュール
Ｏ１’．雄性動物から精子細胞を採取し；
ＤＮＡ選択的蛍光色素で精子細胞を染色し；
精子細胞に電磁放射線を照射して、ＤＮＡ選択的蛍光色素に蛍光を発光させ；
精子細胞により発光された蛍光を検出し；
精子細胞により発光された蛍光を分析して、精子細胞の１以上の特定のＤＮＡ特徴を決定し；
該１以上の特定のＤＮＡ特徴に基づき精子細胞の複数の集団に精子細胞を仕分けし；
精子細胞の該複数の集団の１つから所望のＤＮＡ特徴を有するある量の精子細胞を得；次いで
該量の精子細胞を過冷却し、
ここに、過冷却の工程は、精子細胞が集められた後の約１２時間未満に完了する
工程を含む動物の精子細胞の処理方法。
Ｏ２’．過冷却の工程が、精子細胞が集められた後の約８時間未満に完了するクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ３’．過冷却の工程が、精子細胞が集められた後の約６時間未満に完了するクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ４’．過冷却の工程が、精子細胞が集められた後の約３時間未満に完了するクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ５’．過冷却の工程が、精子細胞が集められた後の約２時間未満に完了するクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ６’．過冷却の工程が、精子細胞が集められた後の約１時間未満に完了するクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ７’．精子細胞が、生精子細胞を含むクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ８’．該１以上のＤＮＡ特徴精子細胞がＸまたはＹ性染色体を含むかどうかを含むクレームＯ７’記載の方法。
Ｏ９’．過冷却する工程の後に該量の精子細胞を解凍し、次いで人工授精によって該量の精子細胞からの精子細胞で卵子を受精させる工程をさらに含むクレームＯ１’記載の方法。
Ｏ１０’．所望の特性を有する複数の量の精子細胞を生成し、該複数の量の精子細胞を商品流通システムを介して動物の飼育者に流通させることをさらに含むクレームＯ１’記載の方法。
Ｐ’．仕分け速度
Ｐ１’．（ａ）生精子細胞の供給にＤＮＡ選択的蛍光色素を添加し；
（ｂ）該精子細胞を含む試料流体およびシース流体を、精子細胞を所望の配向に回転させる傾向にある配向ノズルを通して流させ、該試料流体およびシース流体が、中核流れの周囲の試料流体および精子細胞により形成された中核流れおよびシース流体流れを含む流体流れとしてノズルを出て行き；
（ｃ）ノズルに音響エネルギーを適用して、流体流れをノズルから下流の液滴破壊位置にて液滴の流れに壊し；
（ｄ）電磁放射線のビームを導いて、液滴破壊位置から上流の問い合わせ位置に流体流れを交差させ、精子細胞中の蛍光色素を励起し、それによって精子細胞から蛍光発光させ；
（ｅ）検出された蛍光発光の強度を示す時変アナログシグナルを出力する光検出器で蛍光発光を検出し；
（ｆ）該時変アナログシグナルを電子的に処理して、複数の精子細胞の染色体含量を決定し；
（ｇ）選択的に静電的荷電を流体流れに適用して、液滴中に含有された精子細胞の染色体含量により電荷を液滴に選択的に適用するかまたは適用せず；
（ｈ）電場を用いて、それらの電荷により液滴を偏向させ、それにより異なる電荷を有する液滴中に含有された精子細胞から同一の電荷を有する液滴中に含有された精子細胞を分離し；次いで
（ｉ） 毎秒少なくとも５，０００個の精子細胞の速度にて少なくとも１つの集団の生精子細胞を集める
を含む染色体含量により生精子細胞を仕分けする方法。
Ｐ２’．集める工程において集めた少なくとも１つの集団が、少なくとも８５％の純度を有するＰ１’。
Ｐ３’．該集める工程が、毎秒少なくとも６，０００個の精子細胞の速度で生精子細胞の少なくとも１つの集団を集めることを含むＰ１’。
Ｐ４’．該集める工程が、毎秒少なくとも７，０００個の精子細胞の速度で生精子細胞の少なくとも１つの集団を集めることを含むＰ１’。
Ｐ５’．各々が、統合プラットフォームを共有する間に工程（ｂ）〜（ｉ）を行うように並列に２以上のサイトメトリーユニットを操作し、該統合プラットフォームが、１以上の以下のもの：（１）粒子の共通の供給；（２）電磁放射線の共通の源；（３）共通のハウジング；（４）ユニットの操作を制御するための共通の入力；（５）もう一つのユニットに対して１つのユニットの操作の判定を可能にするためにユニットからの情報を受取りおよび処理するための共通のプロセッサー；および（６）該粒子を含む流体を該フローサイトメトリーユニットに送達するための共通の流体送達システムを含むＰ１’。
Ｐ６’．統合プラットフォームを共有している間に、該２以上のフローサイトメトリーユニットを操作する工程が、モードロックの固体状態レーザーを操作して複数の電磁パルスを含む単一ビームを生成し、各パルスのピーク力が、レーザーの平均パワー出力より大きく、単一ビームを２以上のビームに分割し、次いで該２以上の各ビームをフローサイトメトリーユニットの１つに向かわせることをさらに含むＰ５’。
Ｒ’．ＣＳＤ＆スリットスキャンニング
ａ．精子細胞
Ｒ１’．流れの方向を有する流体流れの中で動物精子細胞の染色体ＤＮＡ特徴を分析する方法であって、各精子細胞が、少なくとも１つの染色体を含む局所的な染色体領域を含む核を有し、該核が、流れフローの方向の長さを有し、
流れフローの方向にほぼ直角に伸びる主軸に沿った長さおよび流れフローの方向にほぼ平行に伸びる短軸に沿った幅を有するほぼ楕円のスポットとして流体流れについて電磁放射線のビームを集中し、ビームスポットの幅が該核の長さ未満であり、該精子細胞を該スポットを通過するように適用する結果、精子細胞から染色体領域の染色体ＤＮＡ特徴を示す該領域からの放射を含む電磁放射線を放射し；
染色体領域からの少なくともいくらかの該放射を該染色体ＤＮＡ特徴を示す時変アナログ電気的シグナルに検出および変換し；
時変アナログシグナルをデジタル的にサンプリングし、次いで該時変アナログシグナルに対応するデジタル情報を含む出力の供し；
デジタル情報を分析して、時変アナログシグナルの誘導特徴を示す情報を抽出し；次いで
少なくとも部分的に該抽出された情報に基づいて特定の染色体ＤＮＡ特徴を有するように少なくともいくらかの精子細胞を分類する該方法。
Ｒ２’．該染色体ＤＮＡ特徴が、精子細胞の性別を示すクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ３’．該精子細胞が、ウシの精子細胞であるクレームＲ２’記載の方法。
Ｒ４’．該染色体領域が、核の縦の中心の一側で約２０％以下の核長を延長する核の領域内に局在化されるクレームＲ３’記載の方法。
Ｒ５’．該染色体領域が、核の縦の中心の一側で約１０％〜１５％以下の核長を延長する核の領域内に局在化されるクレームＲ３’の装置。
Ｒ６’．デジタル的なサンプリング工程が、時変アナログ出力を同調してサンプリングすることを含むクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ７’．該スポット幅が、約３．０未満μｍであるクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ８’．該スポット長が、約１００μｍより大きいクレームＲ７’記載の方法。
Ｒ９’．流れが該ビームを通過する前にそれらを所望の配向にする傾向にある流れにおける精子細胞に対して力を働かせることをさらに含むクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ１０’．該染色体ＤＮＡ特徴により液滴該精子細胞を仕分けする液滴をさらに含むクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ１１’．該染色体ＤＮＡ特徴により該精子細胞を仕分けする光損傷をさらに含むクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ１２’．該染色体ＤＮＡ特徴により精子細胞を仕分けする流体スイッチングをさらに含むクレームＲ１’記載の方法。
Ｒ１３’．該誘導特徴が、閾値に対しシグナル点にて時変アナログシグナルの傾斜を含むクレームＲ１’記載の方法。
ｂ．一般的な粒子
Ｒ１４’．流れの方向を有する流体流れにおける粒子を分析する方法であって、
流れフローの方向にほぼ直角に伸びる主軸に沿った長さおよび流れフローの方向にほぼ平行に伸びる短軸に沿った幅を有するほぼ楕円のスポットとして流体流れについて電磁放射線のビームを集中し、ビームスポットの幅が、該核の長さ未満であり、該粒子が該スポットを通して通過するように適用される結果、粒子から電磁放射線を放射し；
少なくともいくらかの該放射を粒子の特徴を示す時変アナログ電気的シグナルに検出および変換し；
時変アナログシグナルをデジタル的にサンプリングし、次いで該時変アナログシグナルに対応するデジタル情報を含む出力を供し；
デジタル情報を分析して、時変アナログシグナルの誘導特徴を示す情報を抽出し；次いで
少なくとも部分的に該抽出された情報に基づいて特定の特徴を有するように少なくともいくらかの粒子を分類する該方法。
Ｒ１５’．デジタル的なサンプリング工程が、時変アナログ出力を同調してサンプリングすることを含むクレームＲ１４’記載の方法。
Ｒ１６’．該分類により液滴該粒子を仕分けする液滴をさらに含むクレームＲ１４’記載の方法。
Ｒ１７’．該染色体ＤＮＡ特徴により該精子細胞を仕分けする光損傷をさらに含むクレームＲ１４’記載の方法。
Ｒ１８’．該染色体ＤＮＡ特徴により精子細胞を仕分けする流体スイッチングをさらに含むクレームＲ１４’記載の方法。
Ｒ１９’．該誘導特徴が、閾値に対しシグナルの点にて時変アナログシグナルの傾斜を含むクレームＲ１４’記載の方法。
Ｓ’．パルスレーザーＦＣＭ装置
Ｓ１’．粒子問い合わせ位置を通って試料粒子を含む流体流れを導くためのフローチャンネル；
複数の電磁放射（ＥＭＲ）パルスを発するのに作動可能なレーザー、ここに、核パルスは、レーザーの平均パワーを超えるピークパワーを有し、該パルスは、ビーム経路に沿ってレーザーから粒子問い合わせ位置に向けられ；
問い合わせ位置にてパルスの到達を示すタイミングシグナルを生成するのに作動可能なタイミング回路；
問い合わせ位置からのＥＭＲを検出するように適応させ、検出されたＥＭＲの強度を示す時変アナログシグナルを出力する検出器；
入力として時変アナログシグナルを受け入れて、アナログシグナルをサンプリングしてデジタル化された出力を生成するように適応されたアナログデジタル変換器；および
タイミングシグナルの関数としてアナログデジタル変換器からのデジタル化された出力を分析するのに作動可能な電子プロセッサー
を含むフローサイトメトリー装置。
Ｓ２’．レーザーが、約１００〜５００ミリワットのパワーで約５０〜１５０ＭＨｚのパルス周波数にて約１〜１００ピコ秒の幅を有するＥＭＲパルスを発するのに作動可能であるＳ１’の装置。
Ｓ３’．レーザーが、約７０〜１００ＭＨｚの周波数で約５〜２０ピコ秒の幅を有するＥＭＲパルスを発するのに作動可能であるＳ２’の装置。
Ｓ４’．タイミング回路が、各パルスと流体流れとの相互作用により生成された散乱光を含むか、またはＥＭＲパルスの光を含むＥＭＲパルスに対応する光を感知するのに適応されたセンサーを含むＳ１’の装置。
Ｓ５’．タイミング回路が、レーザーを触発してパルスを発するのに作動可能な時計を含むＳ１’の装置。
Ｓ６’．検出器が、パルスの励起エネルギーによって刺激された蛍光発光を検出するのに適応されたＳ１’の装置。
Ｓ７’．レーザーが、モードロックの固体状態レーザーを含むＳ１’の装置。
Ｓ８’．レーザーが、Ｑスイッチのレーザーを含むＳ１’の装置。
Ｓ９’．レーザーが、空洞ダンピングレーザーを含むＳ１’の装置。
Ｓ１０’．検出器が、光電子増倍管であるＳ１’の装置。
Ｓ１１’．光電子増倍管が、約２ナノセカンド未満の応答時間を有するＳ９’の装置。
Ｓ１２’．電子プロセッサーが、パルス波形としてデジタル化された出力を処理するのに作動可能であるＳ１’の装置。
Ｓ１３’．電子プロセッサーが、以下の特徴、デジタル化された出力：臨界傾斜差；パルス立ち上がり時間；パルスピーク；およびパルス領域からの少なくとも１つを抽出するのに作動可能であるＳ１２’の装置。
Ｔ’．パルスレーザー方法
Ｔ１’．粒子が問い合わせ位置を通って流れるように流体流れ中に含まれた粒子を分析する方法であって、
レーザーからの複数の電磁放射（ＥＭＲ）パルスを放射し、ここに、核パルスのピークパワーは、レーザーの平均パワーを超え；
流体流れおよびその中に含まれた粒子を、ビーム経路に沿ってレーザーから問い合わせ位置に該パルスを向けることにより断続的に照らし；
問い合わせ位置からのＥＭＲを検出し；
検出されたＥＭＲの強度を示す時変アナログシグナルを生成し；
問い合わせ位置でのパルスの到着を示すタイミングシグナルを生成し；
時変アナログシグナルをデジタルシグナルに変換し；次いで
デジタルシグナルを分析して流体流れ中の粒子の特徴を決定する
工程を含む該方法。
Ｔ２’．時変アナログシグナルをデジタルシグナルに変換する工程が、パルスによる流体流れの照明と一致するように同調される時間にてアナログシグナルをサンプリングすることを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ３’．流体流れを照らす工程が、該粒子と会合する蛍光体を励起させ、かつ、時変アナログシグナルをデジタルシグナルに変換する工程が、問い合わせの照明の後でかつ該蛍光体の蛍光性の寿命内所定時間にてアナログシグナルをサンプリングすることを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ４’．各パルスが、該蛍光体を飽和するのに十分なパワーを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ５’．問い合わせ位置からの光の検出工程が、光電子増倍管を用いて、該粒子と会合した蛍光体からの蛍光発光を検出することを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ６’．電磁放射線のパルスを発する工程が、毎秒約５０００〜１５０００万パルスの間で発する工程を含み、ここに、各パルスは約１〜１００ピコ秒間の幅を有するＴ１’記載の方法。
Ｔ７’．タイミングシグナルを生成する工程が、パルスと流体流れとの相互作用に起因する散乱光を感知することを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ８’．タイミングシグナルを生成する工程が、クロックシグナルを生成することを含み、かつレーザーからの複数のＥＭＲパルスを発する工程が、刻時シグナルを用いてレーザーを触発しパルスを発することを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ９’．デジタルシグナルを分析する工程が、パルス波形としてデジタルシグナルを分析することを含むＴ１’記載の方法。
Ｔ１０’．デジタルシグナルを分析する工程が、さらに以下の特徴：シグナル；臨界傾斜差；パルス立ち上がり時間；パルスピーク；およびパルス領域から少なくとも１つを抽出することを含むＴ９’記載の方法。
Ｔ１１’．該粒子が精子細胞を含むＴ１’記載の方法。
Ｕ’［留保］
Ｖ’ＣＶ最適化
Ｖ１’．仕分け用の細胞の集団を染色するための一組の条件を評価する方法であって、集団は、第１のタイプおよび第２のタイプの細胞を含み、
（ａ）１組の染色条件下、細胞の集団の画分を蛍光色素で染色し；
（ｂ）染色された細胞が速度Ｒにてフローサイトメーターの問い合わせ位置を通過するように染色された細胞を電磁放射線に曝露し；
（ｃ）曝露した細胞の蛍光発光特性を決定し；
（ｄ）決定された蛍光を用いて、曝露された細胞を１以上のサブ集団の細胞に分類し、ここに、サブ集団の１つは、第１の細胞タイプの富化されたサブ集団であり；
（ｅ）富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特性についての変動係数を決定して、染色条件についての仕分け効率の指標を供し；次いで
（ｆ）仕分け効率を改善するために細胞が染色されるべき染色条件、または染色された細胞がフローサイトメトリーの問い合わせ位置を通過すべき速度Ｒを修飾するかを決定することを含む該方法。
Ｖ２’．該画分が、第１の画分を含み、該組の染色条件が、第１の組の染色条件を含み、さらに、第１の組とは異なる第２の染色条件下で該集団の細胞の第２の画分を染色し、次いで該集団の細胞の第２の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｅ）を行うことを含むクレームＶ１’の方法。
Ｖ３’．変動係数が第１画分について決定された後、第２の画分が染色されるクレームＶ２’の方法。
Ｖ４’．第２の組の染色条件が、少なくとも１つの以下のもの：（１）蛍光色素の濃度；（２）細胞を染色するのに用いた染色期間の長さ；および（３）細胞を染色するのに用いた染色期間中の細胞の温度により第１の組の染色条件とは異なるクレームＶ２’の方法。
Ｖ５’．さらに、第１および第２の組とは異なる第３の組の染色条件下で細胞の該集団の第３の画分を染色し、細胞の集団の第３の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｅ）を行うことを含むクレームＶ２’の方法。
Ｖ６’．さらに、第１、第２および第３の組とは異なる第４の組の染色条件下で細胞の該集団の第４の画分を染色し、細胞の集団の第４の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｅ）を行うことを含むクレームＶ５’の方法。
Ｖ７’．さらに、第１、第２、第３および第４の組とは異なる第５の組の染色条件下で細胞の該集団の第５の画分を染色し、細胞の集団の第５の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｅ）を行うことを含むクレームＶ６’の方法。
Ｖ８’．さらに、第２の組の染色条件を得るために該決定に基づいて第１の組の染色条件を選択的に変更することを含むクレームＶ２’の方法。
Ｖ９’．第２の画分について工程（ｆ）を行なうことにより決定された修飾された染色条件が、残りの細胞の集団の染色に適用されるクレームＶ２’の方法。
Ｖ１０’．細胞の複数の画分が、工程（ａ）において染色され、各画分が、ユニークな組の染色条件下で染色され、ここに、工程（ｂ）〜（ｅ）は各画分について行われ、工程（ｆ）は、各変動係数を用いて、該集団中のさらなる細胞を染色するために用いられるべき染色条件の組を決定することを含むクレームＶ１’の方法。
Ｖ１１’．細胞が、精子細胞であるクレームＶ１’の方法。。
Ｖ１２’．第１の細胞タイプが、Ｘ染色体を担う精子細胞を含むクレームＶ１１’の方法。
Ｖ１３’．工程（ａ）がHoechst３３３４２で細胞を染色することを含むクレームＶ１’の方法。
Ｖ１４’．該蛍光発光特性が、問い合わせ位置を通る細胞の移動に対応する蛍光パルス波形の特徴を含み、該特徴が、以下のもの：（１）蛍光強度の合計および（２）ピーク蛍光強度の少なくとも１つを示すクレームＶ１’の方法。
Ｖ１５’．工程（ｆ）の前に工程（ｅ）からの変動係数が事前決定した変動係数以下であるかを決定し、次いで工程（ｅ）において決定された変動係数が事前決定された変動係数以下となるまで各時点にて異なる組の染色条件を用いて工程（ａ）〜（ｅ）を繰り返して異なる画分の細胞を染色し、ここに、工程（ｆ）は、各染色条件についての工程（ｅ）からの変動係数が事前決定された変動係数以下であるならば、さらなる細胞を染色するための染色条件を用いることを決定することを含むクレームＶ１’の方法。
Ｖ１６．仕分け用の細胞の集団を染色するための一組の条件を評価する方法であって、集団は、第１のタイプおよび第２のタイプの細胞を含み、
（ａ）１組の染色条件下、細胞の集団の画分を蛍光色素で染色し；
（ｂ）染色された細胞が速度Ｒにてフローサイトメーターの問い合わせ位置を通過するように染色された細胞を電磁放射線に曝露し；
（ｃ）曝露した細胞の蛍光発光特性を決定し；
（ｄ）決定された蛍光を用いて、曝露された細胞を１以上のサブ集団の細胞に分類し、ここに、サブ集団の１つは、第１の細胞タイプの富化されたサブ集団であり；
（ｅ）富化されたサブ集団の細胞の蛍光発光特性についての変動係数を決定して、染色条件の仕分け効率の指標を供し；
（ｆ）仕分け効率を改善するために細胞の画分が染色されるべきいずれかの染色条件、または染色された細胞がフローサイトメトリーの問い合わせ位置を通過すべきである速度Ｒを修飾するかを決定し；
（ｇ）残りの細胞の集団に修飾された染色条件を適用する
ことを含む該方法。
Ｖ１７’．さらに、フローサイトメーター中の残りの細胞の集団を仕分けして、第１の細胞タイプの富化された試料集団を得るクレームＶ１６’の方法。
Ｖ１８’．該画分が、第１の画分を含み、該組の染色条件が、第１の組の染色条件を含み、さらに、第１の組とは異なる第２の染色条件下で該集団の細胞の第２の画分を染色し、次いで該集団の細胞の第２の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｅ）を行うことを含むクレームＶ１６’の方法。
Ｖ１９’．変動係数が第１画分について決定された後、第２の画分が染色されるクレームＶ１８’の方法。
Ｖ２０’．第２の組の染色条件が、少なくとも１つの以下のもの：（１）蛍光色素の濃度；（２）細胞を染色するのに用いた染色期間の長さ；および（３）細胞を染色するのに用いた染色期間中の細胞の温度により第１の組の染色条件とは異なるクレームＶ１８’の方法。
Ｖ２１’．さらに、第１および第２の組とは異なる第３の組の染色条件下で細胞の該集団の第３の画分を染色し、細胞の集団の第３の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｆ）を行うことを含むクレームＶ１８’の方法。
Ｖ２２’．さらに、第１、第２および第３の組とは異なる第４の組の染色条件下で細胞の該集団の第４の画分を染色し、細胞の集団の第４の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｆ）を行うことを含むクレームＶ２１’の方法。
Ｖ２３’．さらに、第１、第２、第３および第４の組とは異なる第５の組の染色条件下で細胞の該集団の第５の画分を染色し、細胞の集団の第５の画分を用いて工程（ｂ）〜（ｆ）を行うことを含むクレームＶ２２’の方法。
Ｖ２４’．さらに、工程（ｇ）に先立って、蛍光発光特性についての変動係数レベルが事前決定された変動係数以下を生じる工程（ｇ）において用いたある組の染色条件を選択することを含むクレームＶ１８’の方法。
Ｖ２５’．事前決定した変動係数が、約１．３％以下であるクレームＶ２４’の方法。
Ｖ２６’．工程（ｆ）の前に工程（ｅ）からの変動係数が事前決定した変動係数以下であるかを決定し、次いで工程（ｅ）において決定された変動係数が事前決定された変動係数以下となるまで各時点にて異なる組の染色条件を用いて工程（ａ）〜（ｅ）を繰り返して異なる画分の細胞を染色し、ここに、工程（ｆ）は、各染色条件についての工程（ｅ）からの変動係数が事前決定された変動係数以下であるならば、さらなる細胞を染色するための染色条件を用いることを決定することを含むクレームＶ１６’の方法。
Ｖ２７’．細胞が、精子細胞であるクレームＶ１６’の方法。
Ｖ２８’．第１の細胞タイプが、Ｘ染色体を担う精子細胞を含むクレームＶ２７’の方法。
Ｖ２９’．工程（ａ）が、Hoechst３３３４２で細胞を染色することを含むクレームＶ１６’の方法。
Ｖ３０’．該蛍光発光特性が、問い合わせ位置を通る細胞の移動に対応する蛍光パルス波形の特徴を含み、該特徴が、以下のもの：（１）蛍光強度の合計および（２）ピーク蛍光強度の少なくとも１つを示すクレームＶ１６’の方法。
Ｗ’．落射照明センサーを用いる自動較正
Ｗ１’．液滴破壊位置にて連続的な流体流れを中断するように複数の液滴にある１組の１以上の電荷を選択的に適用または適用せず、かつ液滴を２以上の個別の液滴流れに静電気学的に仕分する液滴仕分けフローサイトメーターを自動的に較正する装置であって、各液滴についての電荷の選択が、連続的な流体流れに含まれた粒子がフローサイトメーターの問い合わせ位置で検出された時期と、液滴破壊位置でのその粒子の到着との間の経過時間の見積りを表す液滴遅延設定に基づいた液滴の予期された含量に依存し、
（ａ）１つの該個別の液滴流れ中の液滴を照らし、液滴に含まれた粒子により発光されたいずれかの蛍光発光を検出し、次いで検出された蛍光発光に代表的な出力シグナルを生成するための問い合わせ位置の下流の落射照明センサー；ならびに
（ｂ）出力シグナルを分析し、（１）液滴遅延設定；および（２）該組の電荷における電荷の許容度（amplitude）のうち少なくとも１つを自動的に調整するように作動可能な制御を含む該装置。
Ｗ２’．制御が、検出された蛍光発光と、予期された含量を有する液滴により生成された蛍光発光との間の差の関数として液滴遅延設定を調節するＷ１’の装置。
Ｗ３’．制御が、該蛍光性の粒子を含む液滴につき検出された蛍光発光の平均ピーク強度における変化の関数として該組の電荷における帯電の程度を調整するＷ１’の装置。
Ｗ４’．該落射照明センサーが、光源、ダイクロイックフィルター、レンズシステムおよび光検出器を含むＷ１’の装置。
Ｗ５’．落射照明センサーが、さらに光源からセンサーが液滴を照らす位置に光を導くのに作動可能な光ファイバーケーブルを含むＷ４’の装置。
Ｗ６’．電場が１対の電気的に帯電したバッフルプレートによって生成され、落射照明センサーが液滴が該バッフルプレート間を通過するように、該液滴を照らすように位置させたＷ５’の装置。
Ｗ７’．落射照明センサーが、液滴が１以上のバッフルプレートにより生成された電場を通って移動するようにバッフルプレートの少なくとも１つを保持する電気的に絶縁された支持体においてホールを通って該液滴を照らすように位置されるＷ６’の装置。
Ｗ８’．光源が、問い合わせ位置にて粒子を照らすのに作動可能であるＷ４’の装置。
Ｗ９’．残りの該２以上の別々の各液滴流れのためのクレームＷ１’のパラグラフ（ａ）に記載された落射照明センサーをさらに含み、該制御が、各液滴流れについての落射照明センサーからの出力シグナルを分析し、少なくとも１つの：（１）１以上の流れについての検出された蛍光発光と液滴流れにおける予期された含量を有する液滴により生成された蛍光発光との間の差の関数としての液滴遅延設定；および（２）該１以上の液滴流れの少なくとも１つで蛍光粒子を含有する液滴につき検出された蛍光発光の平均ピーク強度における変動の関数として該組の電荷における電荷の許容度を自動的に調節するように作動可能であることを含むＷ１’の装置。
Ｗ１０’．電場が、１対の電気的に絶縁されたバッフルプレートにより生成され、落射照明センサーが該液滴が該バッフルプレート間を通過するように該液滴を照らすように位置されたＷ９’の装置。
Ｗ１１’．落射照明センサーが、液滴が１以上のバッフルプレートにより生成された電場を通って移動するように少なくとも１つのバッフルプレートを保持する電気的に絶縁された支持体におけるホールを通って該液滴を照らすように位置させたＷ１０’の装置。
Ｗ１２’．制御が、液滴形成に最適な相の上下約３６度内でチャージさせた液滴の相を自動的に維持するように作動可能であるＷ１’の装置。
Ｗ１３’．制御が、液滴形成に最適な相の上下約１０．８度内でチャージさせた液滴の相を自動的に維持するように作動可能であるＷ１２’の装置。
Ｘ’．自動較正方法
Ｘ１’．液滴破壊位置にて連続的な流体流れを中断するように複数の液滴にある１組の１以上の電荷を選択的に適用または適用せず、かつ液滴を２以上の個別の液滴流れに静電気学的に仕分する液滴仕分けフローサイトメトリーにおける適当な仕分け較正を連続的に確認する方法であって、各液滴についての電荷の選択が、連続的な流体流れに含まれた粒子がフローサイトメーターの問い合わせ位置で検出された時期と、液滴破壊位置でのその粒子の到着との間の経過時間の見積りを表す液滴遅延設定に基づいた液滴の予期された含量に依存し、
（ａ）ビーム軸に沿って前方方向にレンズシステムを通って照明ビームを方向付けることにより該個別の液滴流れのうちの１つにおける液滴を照らして、液滴中に含有されたいずれかの粒子により蛍光光の発光を引き起こし；
（ｂ）該レンズシステムを用いて、いくらかの蛍光光を集め、それをビーム軸に沿って後方方向に方向付けし；
（ｃ）少なくともいくらかの集めた蛍光光を検出し、検出された光に代表的な出力シグナルを生成し；次いで
（ｄ）出力シグナルを分析し、その分析に基づいて、（１）液滴遅延設定；および（２）該組の電荷における電荷の許容度の少なくとも１つを自動的に調整する
ことを含む該方法。
Ｘ２’．調整工程が、検出された蛍光発光と、予期された含量を有する液滴により生成された蛍光発光との間の差の関数として液滴遅延設定を調整することを含むＸ１’記載の方法。
Ｘ３’．調整工程が、該蛍光性の粒子を含む液滴につき検出された蛍光発光の平均ピーク強度における変動の関数として該組の電荷における帯電の程度を調整するＸ１’記載の方法。
Ｘ４’．照明工程が、光ファイバーケーブルを用いて、光を光源から該仕分け液滴流れに隣接する位置に導くことを含むＸ１’記載の方法。
Ｘ５’．電場が１対の電気的に帯電したバッフルプレートによって生成され、照明工程がそれらが該バッフルプレート間を通過するように、該液滴を照らすことを含むＸ１’記載の方法。
Ｘ６’．少なくとも１つのバッフルプレートが、電気的に絶縁された支持体によって保持され、照明工程が液滴が電場を通って移動するように、支持体中のホールを通って液滴を照らすことを含むＸ５’記載の方法。
Ｘ７’．さらに、光源を用いて問い合わせ位置にて粒子を照らすことを含むＸ１’記載の方法。
Ｘ８’．残りの該２以上の各液滴流れについて工程（ａ）〜（ｃ）を行うことをさらに含み、該工程（ｄ）が、各出力シグナルの各々を分析し、次いで少なくとも１つの；（１）検出された蛍光発光と予期された含量を有する液滴により生成された蛍光発光との間の差の関数としての液滴遅延設定；および（２）少なくとも１つの該液滴流れにおいて蛍光粒子を含有する液滴につき検出された蛍光発光の平均ピーク強度における変動の関数として該組の電荷における電荷の許容度を調整することをさらに含むＸ１’記載の方法。
Ｘ９’．電場が、１対の電気的に絶縁されたバッフルプレートにより生成され、照明工程が、該液滴が該バッフルプレート間を通過するように該液滴を照らすことを含むＸ８’記載の方法。
Ｘ１０’．少なくとも１つのバッフルプレートが、電気的に絶縁された支持体によって保持され、照明工程が液滴が電場を通って移動するように、支持体中のホールを通って液滴を照らすことを含むＸ９’記載の方法。
Ｙ’．テストストリーム較正方法
Ｙ１’．液滴破壊位置の連続的な流体流れを中断するように複数の液滴にある１組の１以上の電荷を選択的に適用または適用せず、かつ液滴を２以上の個別の液滴流れに静電気学的に仕分する液滴仕分けフローサイトメトリーにおける適当な仕分け較正を連続的に確認する方法であって、各液滴についての電荷の選択が、連続的な流体流れに含まれた粒子がフローサイトメーターの問い合わせ位置で検出された時期と、液滴破壊位置でのその粒子の到着との間の経過時間の見積りを表す液滴遅延設定に基づいた液滴の予期された含量に依存し、
粒子を含む実質的にゼロの可能性を持つと見積もられた液滴を選択し；
選択された液滴の外にテスト流れを形成するために、選択された液滴に該組の電荷の１つの電荷を適用し；
テスト流れ中の液滴を照らし；次いで
選択された液滴中のいずれかの粒子により発光または散乱されたいずれかの光を検出することを含む該方法。
Ｙ２’．検出工程において検出した光が閾値レベルを超える場合に、液滴遅延設定を調整することをさらに含むＹ１’記載の方法。
Ｙ３’．調整する工程が、自動的に行なわれるＹ２’記載の方法。
Ｙ４’．帯電する工程において適用した電荷が、中間の電荷（neutral charge）であるＹ１’記載の方法。
Ｙ５’．照明および検出工程が、落射照明センサーを用いて行なわれるＹ１’記載の方法。
Ｚ’．仕分け回収システム
Ｚ１’．液滴が液滴破壊位置にて連続的な流体流れから形成されるように、ある組の電荷から液滴の流れにおける各液滴に１つの電荷を選択的に適用するための電荷エレメント；
液滴がバッフルプレート間を通過して、それらの電荷により液滴を仕分けするように配置した電荷エレメントから下流の１対の電気的に絶縁されたバッフルプレート；および
以下のエレメント：（１）荷電エレメントから残骸を取り出すための選択的に作動できる空気システム；および（２）バッフルプレートから残骸を取り出すための選択的に作動できる空気システムの少なくとも１つを含む残骸取り出しシステムを含む
液滴仕分けフローサイトメーター用の仕分けシステム回収システム。
Ｚ２’．該残骸取り出しシステムが、エレメント（１）およびエレメント（２）を含むＺ１’記載のシステム。
Ｚ３’．残骸取り出しシステムが、遊離液滴からの残骸が液滴仕分けに干渉するプロセッサーによる測定に際してプロセッサーにより自動的に作動されるように適応されたＺ１’記載のシステム。
Ｚ４’．残骸取り出しシステムがエレメント（１）を含み、エレメント（１）の該選択的に作動できる空気システムが荷電エレメントから残骸を吸引（vacuum）するための該荷電エレメントに隣接するオリフィスを有する真空通路を含むＺ１’記載のシステム。
Ｚ５’．残骸取り出しシステムがエレメント（２）を含み、エレメント（２）の該選択的に作動できる空気システムが、圧縮ガスがバッフルプレートから残骸を吹き飛ばすために送達されるオリフィスを有する真空通路を含むＺ１’記載のシステム。
Ｚ６’．液滴仕分けフローサイトメーターシステムを操作する方法であって、
電荷エレメントを用いて、液滴が液滴破壊位置にて連続的な流体流れから形成されるように、１つの電荷をある組の電荷から液滴の流れ中の各液滴に選択的に適用し；
荷電エレメントから下流の１対の電気的に絶縁されたバッフルプレート間に液滴を通過させて、それらの電荷により液滴を仕分けし；
プロセッサーを用いて、残骸が液滴仕分けと干渉するかを決定し；次いで
プロセッサーが、液滴仕分けと干渉すると決定した場合に、プロセッサーの制御下で残骸取り出しシステムを用いて該残骸を取り出し、ここに、該残骸取り出しシステムは少なくとも１つの以下のエレメント：（１）荷電エレメントから残骸を取り出すための選択的に作動できる空気システム；および（２）バッフルプレートから残骸を取り出すための選択的に作動できる空気システムを含む該方法。
権利の留保
出願人は、前記されたいずれかの発明の態様に指向される特許請求の範囲ならびに本明細書に記載されたかまたは図面に示されたいずれかの他の主題を要求するために、いずれの指定国においても、補正した特許請求の範囲ならびに継続出願および／または分割出願の提出に関する全ての権利を留保する。
図1は、本発明の例示的な精子仕分けプロセスのためのワークフロー図である。 図2は、本発明のフローサイトメトリー液滴仕分けシステムの１つの具体例の模式図である。 図3は、ノズルシステムによって生じた上向きに動く流体の流れに、励起ビームをフォーカスする落射照明光学アセンブリを示す、液滴仕分けに対する本発明のフローサイトメトリー装置の１つの具体例の一部の側面図である。 図4は、本発明のノズルおよびノズルホルダーの１つの具体例の端面図である。 図5は、図4上の切断面5--5を通る図4のノズルおよびノズルホルダーの断面図である。 図6は、本発明の１つの具体例に従って、楕円形状ビームスポットによって問い合わされる流体の流れ中に同伴された精子細胞の概略図である。 図7は、光学システムからの光ビームが、一般的に側面に向けて、細胞の広い面にぶつかる精子細胞の所望の配向に対する角包装を示す概略図である。 図8は、本発明のノズルボディーの１つの具体例の断面図である。 図9は、ノズルボディーを通る一連の切断面(A-AからH-HおよびJ-JからK-K)を示す図8に示されるノズルボディーの側面図である。図9A-9Hおよび9J-9Kは、図9の対応する面(A-AからH-HおよびJ-JからK-K)に沿って、図8および9に示されるノズルボディーの断面図である。 図10は、ノズルにおける配向バッフルを有するノズルシステムの１つの具体例の断面の透視図である。 図11は、図10で示されるノズルシステムの断面図である。 図12は、図10および11で示されるノズルシステムの一部の拡大部分断面図である。 図13は、図12に示される図と似ているが、図12における見る方向に垂直である方向から撮られた拡大部分断面図である。 図14は、バッフルプレートを維持するバッフルホルダーの１つの具体例の側面図である。 図15は、図14に示されるバッフルホルダーおよびバッフルプレートの上面図である。 図16は、バッフルプレートのレッグが、ノズルにおける楕円Dの長軸に対して平行であるラインで交差するように、ノズル中に回転可能に配向されたバッフルホルダーの１つの具体例の上面図である。 図17は、バッフルプレートのレッグが、ノズルにおける楕円Dの長軸に対して垂直であるラインで交差するように、ノズル中に回転可能に配向されたバッフルホルダーの１つの具体例の上面図である。 図18は、ノズルおよびバッフルを通って、一連の切断面(AAからEE)を示すバッフルを含むノズルシステムの１つの具体例の側断面図である。図18A-18Eは、図18に示されるノズルシステムにおける様々な地点での断面流量範囲を示す。 図19は、ノズルの縦軸に垂直であるバッフルプレートを有するノズルを通して撮られた図12と同様の断面図である。 図20は、図19上に示される切断面20-20を通って撮られた図19に示されるノズルの断面図である。 図21は、ズレた位置にて試料導入導管を有するノズルシステムを示す図18の断面図と同様の断面図である。 図22は、本発明のノズル取付具上に取り付けられたノズルシステムの１つの具体例の斜視図である。 図23は、問い合わせ位置に向かって、本発明のオリフィス部材を通過する時に、回転可能に配向される複数の並べられた精子細胞の概略図である。 図24は、本発明の１つの具体例に従い、ノズルから下流の液滴破壊位置を示す模式図である。 図25は、本発明の破壊センサーシステムの１つの具体例の模式図である。 図26は、本発明の１つのフローサイトメトリーシステムの正面図である。 図27は、明確性のためにシステムの部分を除去した、図26に示されるシステムの一部の拡大透視図である。 図28は、本発明の落射照明光学システムの１つの具体例の模式図である。 図29は、本発明の落射照明光学システムの１つの具体例の斜視図である。 図30は、図29に示された落射照明光学システムの側面図である。 図31は、図29および30に示された落射照明光学システムの上面図である。 図32は、図30の面32-32に沿った落射照明光学システムの断面図である。 図33は、図31の面23-33に沿った落射照明光学システムの一部の断面図である。 図34は、図29に示される落射照明光学システムのダイクロイックフィルターの後方にある光学フィルタリングシステムの部品のみを示す透視図である。 図35は、円柱レンズの並進調整を含む本発明のもう１つの落射照明光学システムの透視図である。 図36は、入射の湾曲された角度にて、ノズルの下流の流体の流れにフォーカスされたレーザービームを示す本発明の１つの具体例の問い合わせ位置の概略図である。 図37は、本発明の仕分け較正システムの１つの具体例の概略図である。 図38は、図37に示される仕分け較正での使用のための落射照明センサーの１つの具体例の概略図である。 図39は、本発明によるデジタル細胞アナライザー(DCA)およびプロセッサーコントローラーの１つの具体例のブロック図である。 図40は、２つのチャネルを示す本発明のマルチチャネル仕分け器の１つの具体例の概略図である。 図41は、４つのチャネルを示す本発明のマルチチャネル仕分け器の１つの具体例のワークフロー図である。 図42は、本発明によるアナログ細胞アナライザー(ACA)の１つの具体例のブロック図である。 図43は、10,000細胞/秒の平均速度にて流れる細胞からの蛍光パルスを検出する光検出器アウトプットからの波形パルスの流れを示すグラフである。 図44は、10,000細胞/秒の平均速度にて流れる３つの細胞からの３つの蛍光パルスを検出する光検出器アウトプットからの流れを示す図43の分解図である; 100MHz液滴クロックの方形波は、図上に重ねられて、３つのパルスおよび液滴クロックの方形波パルスの間の同期化を示している。 図45は、狭い幅を有するレーザービームスポットに対する精子細胞の動きを示す。 図49は、105MHz連続サンプリング速度にて、122試料に基づく単一の蛍光パルスを検出する光検出器からの時変アナログアウトプットに対応するデジタル情報の例示的な図である。 図50は、本発明の１つの具体例におけるレーザーパルス、レーザーパルスから得られる細胞からの蛍光発光および光検出器アウトプットのデジタル試料の間のタイミング関係を示す概略図である。 図51は、図50に示されるデジタル試料が、どのようにパルス波形を形成するかを示す概略図である。 図52は、X精子細胞に対するパルス波形においてより高いピーク強度を示すY精子細胞のパルス波形と同期化されたX精子細胞からのパルス波形の概略図である。 図53は、パルス分析に使用され得る閾値および積分ウィンドウを示すパルス波形の概略図である。 図54は、スリットスキャニング技術によって得ることができる高解像度を示すXおよびY精子細胞を含有する試料のヒストグラムである。 図55は、標準的照明によって得られる比較的劣った解像度を示すXおよびY精子細胞を含有する試料のヒストグラムである。 図56-59は、精子核および生精子細胞に対するピーク対面積の蛍光ヒストグラムおよびバラツキ図を示す。 図60-61は、精子細胞に対する蛍光強度ヒストグラムの４部品モデルを示す-図60は生データを示し、図61は、図60に示されるデータに基づく本発明の反復アルゴリズムの１つの具体例によって生じるモデル曲線を示す。 図62-63は、精子細胞に対する蛍光強度ヒストグラムの３部品モデルを示す-図62はデータを示し、図63は、図62に示されるデータに基づく本発明の反復アルゴリズムの１つの具体例によって生じるモデル曲線を示す。 図64は、CSD特徴の非直線性質を示す;上部パネルは、X-担持およびY-担持精子細胞に対する平均Mプロットを示す;中間パネルは、平均Y-担持蛍光発光パルスのピーク高未満のシグナル振幅値に対するこれらの平均Mプロット（つまり、M'）の一次導関数のグラフを示す;および下部パネルは、シグナル振幅の関数として、一次導関数(M'X-M'Y)の間の差を示す。 図65は、CSD特徴が、蛍光発光パルス上の２つの点を通過するラインの計算された傾きである１つの具体例を示す。 図66-69は、CSD特徴抽出の使用によって達成された改善された識別を示す。 図70は、CSD対パルス面積のバラツキ図上に設定された二変量仕分け領域を示す。 図71は、高回収/同時受入仕分け戦略(同時発生打切戦略無し)に対応する左パネルおよび高純度/同時拒否仕分け戦略(同時打切戦略)に対応する右パネルにおけるテストのためのフローサイトメトリー再分析の１つの具体例を示す。 図72は、本発明のデジタルシグナル処理の１つの具体例のワークフロー図である。 図73は、本発明の１つの具体例に従って使用されてもよいk-平均法クラスタ化戦略の一例である。 図74は、発明の１つの具体例に従って使用されてもよいように、パルス特徴データへのベイズ最小誤差決定則の適用の概念図およびグラフ表示である。 図75は、発明の１つの具体例に従って使用されてもよいように、ベイズ最小誤差決定則およびマハラノビス距離閾値処理を使用して得られる結果のグラフ表示である。 図76は、本発明の１つの具体例に従って使用されてもよいように、「忘却」を供するための移動ウィンドウ統計の概念図である。 図77は、本発明の１つの具体例に従って使用されてもよいグラフ表示ドリフト補償である。 図78は粒子の例示的分布を含有する流体の流れを示す。 図79は、同時発生受入仕分け戦略によって、流体送達速度の関数として、純度を示す図である。 図80は、同時拒否仕分け戦略によって、流体送達速度の関数として、使用可能な集団に上手く仕分けられた所望の粒子のパーセンテージを示す図である。 図81は、該集団への仕分けについて拒否された同時液滴のパーセンテージと比較した、所望の粒子の集団への仕分けについて受諾された同時液滴のパーセンテージの間の反比例関係を示す図である。 図82は、本発明の仕分け装置の１つの具体例の全体的な操作を示す決定フロー図である。 図83は、水平速度要素を有する液滴の流れおよび液滴を収集するための収集システムを生成するように向けられたサイトメーターの側面図である。 図84は、ノズルシステムおよび偏向板に対して示される図83に示される収集システムの拡大透視図である。 図85は本発明の収集システムの１つの具体例の概略図である。 図86は、図83に示される収集システムのインターセプティングデバイスの正面図である。 図87は、図83に示される収集システムのインターセプティングデバイスの側面図である。 図88-95は、いくつかの精子遠心分離実験のグラフ結果を示す。 図96-98は、本発明の濾過方法の１つの具体例における工程を示す概略図である。 図99は、精子細胞を濾過するのに使用される濾過システムの１つの具体例の概略図である。 図100は、フィルター精子細胞を濾過するのに使用されるもう１つの濾過システムの概略図である。 図101および102は、精子細胞濾過結果のグラフ結果を示す。 図103は、本発明の冷凍保存方法の１つの具体例に対するワークフロー図である。 図104は、精子細胞冷凍保存実験に対するグラフ結果を示す。 図105は、本発明に従って、精子細胞を処理する方法の１つの具体例に対するワークフロー図である。 図106は、仕分け器の内部特徴を示すために分解された部分を持つ本発明のマルチチャネル粒子仕分け器の１つの具体例の斜視図である。 図107は、図106のマルチチャネル粒子仕分け器において、流体送達に使用されてもよいマニフォールドシステムの斜視図である。 図108は、マニフォールドシステムの内部流体接続を示す図107のマニフォールドシステムの斜視図である。 図109は、仕分け器の内部特徴をよりよく示すために、さらなる要素を除去あるいは部分的に除去した、図106に示される粒子仕分け器の斜視図である。 図110は、図106で示される粒子仕分け器の正面図である。 図111は、仕分け器の内部特徴を示すようにハウジングの側壁を除去した、図106に示される粒子仕分け器の側面図である。 図112は、（図107が撮られた側とは反対側から撮られた）仕分け器の内部特徴を示すために側壁を除去した図106に示される粒子仕分け器の側面図である。 図113は、仕分け器の後方の角度から撮られ、仕分け器の内部特徴を示すようにバックカバーを除去した図106に示される粒子仕分け器の斜視図である。 図114は、複数のノズルシステムのクロスバーへの取り付けを示す図106に示される粒子仕分け器の一部の斜視図である。 図115は、粒子仕分け器の収集システムおよび他の部分の相対的位置を示す図106に示される粒子仕分け器の一部の斜視図である。 図116は、本発明のマルチチャネル仕分け器に対する流体送達システムの１つの具体例の概略図である。 図117および118は、２つの異なるレーザービーム分割システムの概略図である。 図119および120は、本発明のもう１つのマルチチャネルシステムの透視図である。 図121-134は、様々な実験のグラフ結果を示す。 図135は、ノズルが流体の流れを毛管を通って向ける本発明のノズルシステムに対する１つの代替具体例の概略図である。 図136は、本発明の光損傷仕分けシステムの１つの具体例の概略図である。 図137は、本発明の技術を使用する装置において使用されてもよい流体スイッチに基づく代替仕分けシステムの概略図である。 図138は、分析された粒子を運ぶ流体の流れの選択された別々のセグメントを転換する高速液滴緩衝流に基づいた代替仕分けシステムの概略図である。 図面を通して、対応する部分は、対応する参照番号によって示される。各部分に対する関連した参照数字の部分リストが続く。部分リストは、部分リストの使用を促進するために、一般的に、明細書中のセクションの見出しに対応したセクションの見出しと一緒に提供される。一般的には、部分リストの各セクションは、詳細な記載の対応するセクションにおいて、初めて紹介される部分に対する参照数字を提供する。
符号の説明
各部分につき関連した参照数字の部分リスト
総括
39 精液収集
41 精液を標識する
41A 緩衝剤を添加する
43 質制御
47 洗浄
48 流体を染色する
49 染色する
51 インキュベーション
53 フローサイトメーターの試料導入デバイスに負荷する
54 フローサイトメトリーを介してシース流体を添加する
55 仕分ける
57 仕分けられた精子を収集する
58A 収集流体を添加する
58B 精子細胞を濃縮する
58C 低温エキステンダーを添加する
59 仕分けられた精子をストローに負荷する
61 冷凍保存
63 液体窒素中にパックする
65 分配
67 販売
69 貯蔵
71 人工授精

フローサイトメトリー
1 システム(全体的な)
3 キャリアー流体の供給
7 シース流体の供給
9 仕分け能力を持つフローサイトメトリー装置
15 流体送達システム
17 キャリアー流体
19 シース流体
21 流体の流れ
23 粒子の流れ
25 電磁放射線のビーム
31 粒子からの電磁放射線の発光
33 液滴
35 液滴中に含有された粒子

フローサイトメトリー装置(シングルチャネル)
101 ノズルシステム
103 ノズルオリフィス
105 変換器
107 液滴破壊
109 光学システム
115 問い合わせ位置
117 光検出器
119 仕分けシステム
123 液滴の第１の異なる群または集団
125 液滴の第２の異なる群または集団
2201 収集システム
131 プロセッサー

ノズルシステム
133 円筒型フローボディー
135 中心長軸内径
137 ノズル
139 漏斗型ノズルボディー
141 ノズルボディーを通る流路
145 内側螺合穴ぐり
149 螺合突起またはスタッド
155 O-リングシール
157 導管(管状針)
167 環状空間(ギャップ)
173 フローボディー(シース流体)の半径内径
183 第２の半径内径(さらなるシース流体)
189 キャリアー流体の中心コア
191 流体の外側同軸シース

細胞配向
201 ウシ精子細胞
205 パドル形状のヘッド
207 平坦で広い対向面
209 エッジ
211 精子赤道
213 核
215 尾
217 核の長さ
219 ヘッド長さ
221 ヘッド幅
223 全体的な長さ
225 核内の局所化領域
227 流れ流量の向き
229 光ビームが広い面にぶつかる角エンベロープ
R1 角範囲
P 面

ノズルデザイン
231 ノズルボディーの内部
233 ノズルボディーの内面
235 第１の軸方向にテーパーを施した領域
237 第２の軸方向にテーパーを施した領域
239 第３の軸方向にテーパーを施した領域
247 ノズルの縦軸
249 ノズルの第４の内部
251 第４の領域の軸の長さ
255 オリフィス部材
257 ノズルの前端の穴ぐり
259 第１のねじれゾーン
261 第２のねじれゾーン
263 第１のねじれゾーンの表面
267 第２のねじれゾーンの表面
271 ねじり力
273 第１のねじれゾーンの軸の長さ
275 第１のテーパー領域の軸の長さ
277 第２のテーパー領域の軸の長さ
279 第２のねじれゾーンの軸の長さ
309 オリフィス部材の円錐上流面
315 オリフィス部材の円筒下流面
317 円錐上流面の軸方向の長さ
327 下流表面の軸の長さ

配向バッフル
2001 配向バッフル
2003 バッフルプレート
2005 バッフルホルダー
2007 上流レッグ
2009 下流レッグ
2015 交差の線
2017 ノズルボディーの中心軸
2019 上流レッグの曲面エッジ
2025 距離下部レッグは下流に延びる
2027 バッフルホルダーの全体的な長さ
2029 バッフルホルダーの外径
2031 バッフルホルダーの内径
2033 交差の線およびノズルの中心の間の距離
2035 バッフルの上流端
2037 バッフルホルダーの傾斜面
2039 下流レッグのサイドエッジ
2041 下流レッグの下流エッジ
2049 バッフルプレートおよびバッフルホルダーの間のギャップ
2051 バッフルホルダーの内部表面
2053 バッフルプレート背後の容量
2055 ノズルの内部容量
2057 円柱バッフルホルダーの縦軸
2059 楕円Dの長軸を通るライン
2061 注入針およびバッフルの間の距離
2067 バッフルホルダーの下流端
2069 バッフルホルダーおよびノズルの間の接触点
2071 O-リング
2077 ノズルホルダー(ボス)の下流端
2079 ボスの内径
2081 コア流およびノズル表面の間のシース流体の部分
2087 上流(A)での切断面
2089 バッフル(B)での切断面
2091 バッフル(C)での切断面
2093 バッフル(D)での切断面
2094 バッフル(E)の下流での切断面
2097 垂直なバッフルシステム
2095 気泡
2099 垂直なバッフルプレート
2101 垂直なバッフルプレートの曲面エッジ
2103 垂直なバッフルプレートの真っ直ぐなエッジ
2105 O-リング
2107 ノズルにおける環状ショルダー（シェルフ）
2109 試料注入針(導管)の外径
2151 ズレた試料導入導管を有するノズルシステム

ノズル取り付けおよび調整
331 ノズル取付具
333 第１の直線ステージ
337 第２の直線ステージ
339 X軸
341 Y軸
343 第３の回転ステージ
345 Z軸
347 固定された第１のステージ部材(図示せず)
349 第１の固定されたステージ部材のためのフレーム
355 可動性の第１のステージ部材
357 第１のステージのためのアクチュエータ(マイクロメーター)
359 固定された第２のステージ部材
361 可動性の第２のステージ部材
363 第２の部材のためのアクチュエータ(マイクロメーター)
365 固定された第３のステージ部材
371 可動性の第３のステージ部材
373 第３のステージに対するアクチュエータ(マイクロメーター)
375 細胞を含有する流れの略上向き方向
377 上向き方向の角度

変換器および液滴形成
379 カラー
381 圧電素子(図示せず)
383 端子
D 流れの直径

破壊センサー
389 破壊センサー
391 マイクロプロセッサー
393 光源
395 線状フォトアレイ(フォトダイオード)
401 液滴破壊センサー用のレンズ
405 電圧オペアンプ回路への電流
407 トラック/ホールド増幅器
409 正弦波発生器(トラック/ホールドシグナル)
411 A/D変換器
412 カメラシステム
413 ストロボ
414A マスク
414B マスクにおけるスリット形状開口

落射照明工学システム
415 落射照明システム
417 落射照明器具
419 縦光学軸
425 ビームスポット
427 フォーカスされた照明ビームの軸
429 長方形のベース
431 反射フィルター
435 レーザーまたはアーク放電ランプ
437 レンズアセンブリを調整
439 開口
441 ダイクロイックチャンバーの側壁
443 ダイクロイックチャンバー
445 保持リング
447 中性密度フィルター
449 円柱レンズ
455 レンズホルダー
457 ジャムナット
459 ビームスポットの楕円断面図
461 フィルターを反すためのクリップ
463 フィルターホルダー
465 フィルターホルダーの角面
467 フィルターホルダーの開口
469 フィルターホルダーに対する直線ステージ
471 X軸
473 アウトリガ
475 直線ステージに対するアクチュエータ
477 ダイクロイックフィルター
479 ダイクロイックフィルター用のクリップ
485 ダイクロイックフィルター用のフレーム
487 順方向
489 光学器具の長軸光学軸
491 フォーカスアセンブリ
497 細胞によって発光された蛍光パルス波形またはシグナル
498 励起空間関数
501 顕微鏡アダプター
503 ダイクロイックチャンバーの前面壁における開口
505 ダイクロイックチャンバーの前面壁
507 フォーカスバレル
509 レンズ取り付けバレル
511 フォーカスレンズ
513 後方方向
515 伸縮式フォーカス調整
517 平行発光された光
519 フィルタリングシステム
521 発光フィルター
523 発光フィルターホルダー
525 ダイクロイックチャンバーの裏壁における開口
527 ダイクロイックチャンバーの裏壁
529 整列薄膜アセンブリ
531 整列薄膜のスライダー
533 フィルターアセンブリ構成要素のためのレール
535 整列薄膜のためのフィルターホルダー
539 薄膜フィルターエレメント
541 フィルターエレメントをフィルターホルダーに取り付けるためのクリップ
543 光学軸に対する整列薄膜についての角度
545 スライダーをべースに固定するためのファスナー
547 ベース中の平行スロット
549 非球面レンズ
551 非球面レンズのためのホルダー
553 非球面レンズ用のフレーム
557 非球面レンズ用のファスナー
559 空間フィルター
561 開口プレート
563 空間フィルタープレート用のフレーム
567 垂直スリット
571 水平スリット
573 開口
575 垂直寸法
577 水平寸法
579 収集容量
583 プレートホルダー
587 プレートホルダー用のファスナー
589 開口プレートのためのバッキング部材
449A 調整可能な取り付けアセンブリ
449B スロット
449C スロット
450 蛍光発光を反射する落射照明
451 ダイクロイックフィルター

光検出器
591 光検出器用の取り付けプレート
595 光検出器用のファスナー

ビーム入射の角度
605 問い合わせ位置およびノズルオリフィスの間の距離
609 ビーム軸
A 入射の角度

フォーカスされたビームスポット
L1 長軸に沿った長さ
W1 短軸に沿った幅

仕分けシステム
627 荷電デバイス
629 荷電された偏向板
631 荷電要素
633 荷電要素における開口
635 偏向板用の電力供給
5001 調整可能な取り付けアセンブリ
5003 取り付けアセンブリ調整ボード
5005 取り付けアセンブリバッキング
5007 ファスナー
5009 スロット
5011 並進軸
5013 並進軸
5015 取り付けアセンブリ調整ボード
5017 ファスナー
5019 スロット
5021 固定支点
5023 ファスナー
5025 スプリング

自動仕分け較正
4201 較正システム
4203 落射照明センサー
4205 光ファイバーケーブル
4207 ダイクロイックフィルター
4209 レンズシステム
4211 液滴中の粒子からの蛍光発光
4213 光検出器
4215 ビームストップ


仕分けシステム欠陥修正
5047 荷電要素に対するデブリス除去システム
5049 偏向板に対するデブリス除去システム
5051 荷電要素に対するサポート
5053 真空通路
5055 真空ライン
5057 荷電要素に隣接した開口
5058 フィッティング
5059 加圧ガスライン
5061 マニフォールド
5063 空気通路
5064 開口
5065 フィッティング
5066 偏向板の側面

仕分けられた試料の保護
4033 収集容器
4041 汚染防止メカニズム
4043 空気圧式アクチュエータ
4045 スイングアーム
4047 スイングアームの末端

流体送達システム
645 シリンジポンプ
647 ポンプからキャリアー供給までのフローライン
649 キャリアー流体の供給を含有するための容器
651 ポンプから注入針へのライン
657 シリンジポンプから針への供給ライン
659 可変速モーター
661 シース流体の供給のための第２の容器
667 ノズルにおける半径内径にシース流体を接続するための供給ライン
669 供給ラインにおける制御弁
671 シース流体に対するガス圧システム
675 加圧ガスの源
679 加圧ガスのエアーライン
681 シース流体タンクに供給される圧力を制御するための調節装置
683 エアーラインにおける二方弁

制御
689 A/D変換器
693 ビームスポットを通って動く点によって経験される相対的なビーム強度
695 ビームスポット横切る精子からの相対的発光パルス強度
d ノズルおよび液滴破壊位置の間の距離

シグナル処理
701 光検出器からのアウトプットシグナル
703 液滴発生クロックシグナル
705 デジタルシグナル処理(デジタル細胞アナライザー)
707 A/Dからのデジタルシグナル
735 PC/コンピューターターミナル
737 マスタークロック(128 x クロックシグナル)
739 データ獲得(HH1')
741 検出パラメーター(HH1)を初期設定する
745 識別パラメーター(HH2)を初期設定する
747 デジタルパルス検出(HH3)
749 デジタルパルス分析-特徴抽出(HH4)
753 パルス面積(HH5)
755 パルスピーク(HH6)
757 パルス識別(HH7)
759 仕分け(HH8)
761 ドリフト分析(HH9)
763 ベイズ則についての決定境界
769 初期設定
771 システムチェック
773 ユーザー相互干渉
775 リトライ(３回まで)
777 フラッシュ
779 ビーズ品質制御
781 試料を吸収
783 試料質制御
785 サンプリングを開始
787 仕分けオン
789 サンプリング完了
791 サンプリング継続
793 仕分けオフ
795 X/Y識別最適
797 X/Y識別を設定
799 識別OK
801 速度最適
803 シリンジ速度を設定
805 速度OK
807 システムチェック
809 システムリセット
811 システムOK
813 例示的総操作流
825 積分器
827 幅/面積コンパレータ
829 動的 閾値計算器
831 パルス識別
833 JTAGポートI/O
837 ウィンドウコンパレータ (面積)
839 パルス幅およびトリガーロジック
841 仕分け決定
843 I/Oコントローラー
845 スレーブコントローラー
847 仕分けコントローラーボード
849 USB
851 DSPボードSDRAM
853 仕分けシグナル
854 低域フィルター
855 I/OボードSDRAM
857 プロセッサー I/O
859 周辺I/Oバス
861 仕分けパルス発生器
863 データ管理プロセッサー
865 パルス検出プロセッサー
867 特徴抽出プロセッサー
873 仕分けプロセッサー
875 DSPボードRAM
OL 使用不可能な集団中の同時液滴と比較した使用可能な集団中の同時液滴の間の反比例関係
P1 85% 純度に対応するラインOL上の点
LL 所望の粒子の60%収集に対応するラインOL上の点
OR 操作範囲(P1およびLLの間のOLのセグメント)
6000 生データ
6001 並べられていない細胞の第１の集団
6003 並べられていない細胞の第２の集団
6005 並べられたY集団
6007 並べられたX集団
6010 未加工データ
6011 並べられていない細胞の集団
6015 並べられたY集団
6017 並べられたX集団

マルチチャネルシステム
1001 マルチチャネルシステム
1003 フローサイトメトリーユニット
1005 共通粒子供給
1007 電磁放射線の共通源
1009 共通ハウジング
1011 制御のための共通インプット
1019 共通アウトプット
1021 共通流動体送達システム
1023 共通温度制御システム
1025 共通電力源
1027 共通廃棄回収システム
1029 共通偏向板システム
1031 共通清浄システム

共通ハウジング
1069 ベース
1071 ２つの側壁
1073 ショルダーの下部対
1075 より低いカバーパネル
1077 ハウジングの前
1081 ショルダーの上部対
1083 上部カバーパネル
1085 ハウジングの後方
1087 複数のサイトメトリーユニットを取り付けるためのフレームワーク
1089 (ノズルマウントを取り付けるための）ハウジングの側壁に付けられた横棒
1093 側壁の間に延びる斜軸式設置プレート

共通流体供給
1105 キャリアー流体のためのポンプ
1107 キャリアー流体の共通供給
1115 シース流体に対するガス圧システム
1117 シース流体の共通供給
1121 マニフォールドシステム
1123 キャリアー流体の共通供給を含有する容器
1125 容器用のホルダー
1133 ホールディングブロック
1135 容器を受け取るためのキャビティー
1137 緩衝材料用の第２のキャビティー
1139 緩衝材料用の容器
1141 シリンジポンプ
1147 シリンジポンプからマニフォールドへの供給ライン
1149 キャリアーおよび緩衝流体を制御する三方弁
1155 シース流体の共通供給のための容器
1157 シース流体容器からマニフォールドへの供給ライン
1161 加圧ガスの源
1163 ガスライン
1165 ガスライン中のレギュレーター
1167 ガス源およびシース流体タンクの間のガスラインのための二方弁
1169 清浄液の供給を加圧するためのガスライン
1173 清浄液のタンク
1175 清浄液に対するガスラインのための二方弁
1177 マニフォールド
1179 ラミネート加工されたブロック
1181 経路
1185 流体流量回路
1189 シリンジポンプに接続されたインレット
1191 シース流体の供給に接続されたインレット
1193 キャリアー流体およびシース流体のためのアウトレット
V1-V6 マニフォールド通路を通っての流れを制御するための弁
1203 (マニフォールドブロックを付着するための) フレーム部材
1205 ブロックに螺合されたフィッティング
1207 試料容器
V1A-V1D (試料流体のノズルへの流れを制御するための)二方弁
1217 試料容器の針
1221 廃棄システム
1223 廃棄タンク(容器)
1225 (真空を発生するための）真空ポンプのようなメカニズム
1227 (弁V1A-V1Dを廃棄タンクに接続する)廃棄ライン
1233 (廃棄タンクおよび真空ポンプを連結するラインにおける)疎水性フィルター
1235 シース流体のための流体回路
V2A-V2D (シース流体のノズルへの流れを接続するための)二方弁
1241 シース供給ライン
1247 シース流体流回路を廃棄タンクに連結する廃棄ライン

共通電力供給および制御
1249 共通電力供給
1251 共通電力送達システム
1253 共通インプット(GUI)
1255 (マイクロプロセッサーへの)共通アウトプット

共通温度制御
1257 温度制御システム
1259 流体流回路(温度制御用)
1263 (ホールディングブロックにおける温度制御のための）流体通路
1265 制御ユニット
1269 (マニフォールドにおける温度制御のための）流体通路
V6 シャットオフ弁

共通光ビームおよびビーム分割システム
1270 ビームスプリッター
1270A ビームスプリッターからの第１のビーム
1270B ビームスプリッターからの第２のビーム
1271 第２のビームスプリッター
1271A 第２のビームスプリッターからの第１のビーム
1271B 第２のビームスプリッターからの第２のビーム
1272 第３のビームスプリッター
1272A 第３のビームスプリッターからの第１のビーム
1272B 第３のビームスプリッターからの第２のビーム
1273 ビームガイダンスシステム
1279 下部フィルターアセンブリ
1281 上部ミラーアセンブリ
1285 (下部フィルターアセンブリ用の)ベース
1289 (下部フィルターアセンブリ用の)ステージ
1291 ステージを移動させるためのメカニズム(マイクロメーター)
1293 ステージ上の傾斜可能プラットホーム
1295 (プラットホーム上の)ミラー
1297 (上部ミラーアセンブリ用の)ベース
1299 (上部ミラーアセンブリ用の)ステージ
1301 (上部ミラーアセンブリ用の)傾斜可能プラットホーム
1303 (上部ミラーアセンブリ用の)ミラー
1305 上部ステージを移動させるためのメカニズム
1309 (ハウジングの側壁に付けた)標的プレート
1311 (標的プレートにおける)垂直に整列させた穴
1315 第１の反射フィルター
1317 第２の反射フィルター
1319 第３の反射フィルター
1321 第４の反射フィルター

共通偏向板
1331 ２つの共通偏向板
1333 (ハウジング上に共通偏向板を取り付けるための）フレーム

モジュラーマルチチャネルシステム
4001 マルチチャネルシステム
4009 モジュラーサイトメトリー ユニット
4011 モジュラーユニットのためのハウジング
4013 共通ハウジング
4015 レーザー
4017 ビーム分割およびガイダンスシステム
4021 モジュラーハウジングに進入するためのレーザーに対する穴
4023 出口穴を覆うためのプレート
4025 システムのための収集システム

毛管ノズルシステム
1335 毛管ノズルシステム
1337 毛管
1341 光透過媒体で充填されたチャンバー

代替仕分けシステム
1351 光損傷仕分けシステム
1353 第２のレーザー
1355 収集容器
1357 流体スイッチシステム
1359 流体スイッチデバイス
1361 第１収集容器への毛管分岐
1365 第２収集容器への毛管分岐
1367 (流体流の方向を選択的に制御するための圧力波を発生させる)変換器
1369 ノズルの末端上の毛管

1371 液滴緩衝流仕分けシステム
1373 高速液滴緩衝流れ
1375 高速液滴流れに対する液滴発生システム
1377 高速ノズルシステム
1379 高速の流体の流れ
1381 液滴緩衝流発生のための変換器
1383 高速液滴
1387 高速液滴偏向のための電気偏向プレート
1389 荷電されていない液滴
1391 荷電された液滴
1397 流体の流れの転換されたセグメント
1399 高速液滴流れの同軸流体の流れとの交差
1403 収集毛管

収集システム
2201 収集システム
2203 インターセプティングデバイス
2205 インパクト表面
2207 収集容器
2211 液滴進入路
2213 ピペットのバルブ
2215 ピペット
2217 ピペットの内壁
2225 導管
2227 収集システムフレーム
2229 円状ホルダー
2231 インターセプティングデバイスの高さ用の位置決めねじ
2233 プレートを取り付ける
2235 側面調整用の位置決めねじ
2241 側面スロット
2243 収集容器を保持するためのトレイ
2245 出口ウィンドウ
2247 第１のインターセプティングデバイス
2249 第２のインターセプティングデバイス
2265 漂遊液滴

収集流体
2301 収集流体

濾過
2401 フィルター
2403 濾過用の収集容器
2405 精子細胞を含有する濃縮されたスラリー
2409 シリンジメカニズム
2411 カニューレフィルター
2413 再懸濁流体
2419 第２の容器
2421 濾過実験のためのシリンジ
2423 濾過実験のための試料
2425 濾過実験のためのフィルター
2427 濾過実験のための真空ポンプ
2431 濾過実験IIのためのシリンジ
2433 濾過実験IIのための試料
2435 濾過実験IIのためのフィルター
2437 濾過実験IIのためのフィルターホルダー

冷凍保存
2501 濃度を調整する
2503 抗凍結剤を添加する
2505 蛋白質源を添加する
2507 ストローに負荷する
2509 保持温度まで冷却する
2511 保持温度にて維持する
2513 臨界ゾーンに近い温度まで冷却する
2515 氷結晶形成の範囲を通して冷却する
2517 液体窒素中に浸漬する

共通収集システム
2801 共通収集システム
2803 インターセプティングデバイス用の共通フレーム
2805 廃棄物トラフ
2807 収集容器のためのトレイ

パルスレーザーシステム
3001 パルスレーザー
3003 レーザーパルスセンサー
3005 レーザーパルス
3007 蛍光パルス寿命壊変
3009 デジタル試料

Claims (11)

  1. 精子細胞のＤＮＡ含有量に従い、精子細胞をＸ染色体担持精子およびＹ染色体担持精子に仕分けるためのマルチチャネルシステムであって:
    各々が、電磁放射線のパルスビームを用いて該精子細胞を含有する流体の流れを照射することによって、精子細胞の混合物から性別分類精子細胞を供することが可能な複数のフローサイトメトリーユニットを含み;
    ここに、各フローサイトメーターユニットは、液体の流れが電磁放射線のパルスビームによって照射されるにつれ、液体の流れ中の照射された精子細胞のＤＮＡ含有量を示すシグナルを生じさせることができるセンサーを含み；
    該ユニットがユニットからの情報を受信し処理してもう一方のユニットに対する１つのユニットの操作の評価を可能にする共通プロセッサー、およびパルス電磁放射線の共通源を含む統合プラットホームを共有し、ここに該共通プロセッサーは各フローサイトメーターユニットからのシグナルを受信することを特徴とする該システム。
  2. 該フローサイトメトリーユニットが、平行で操作するように適合される請求項１記載のシステム。
  3. 該複数のフローサイトメトリーユニットが、各精子細胞に対応するシグナルに反映されたＤＮＡ含有量の差に基づき、精子細胞を、Ｘ染色体担持精子の豊富化集団および／またはＹ染色体担持精子の豊富化集団に仕分けることが可能な請求項１記載のシステム。
  4. 統合プラットホームが、さらに、パルス電磁放射の共通源を含み、該複数のフローサイトメトリーユニットが、ジェットインエアー液滴仕分けフローサイトメトリーユニットを含む請求項３記載のシステム。
  5. 精子細胞のＤＮＡ含有量に従って精子細胞をＸ染色体担持精子およびＹ染色体担持精子に仕分けるマルチチャネル方法であって:
    複数のフローサイトメトリーユニットを供し;
    該フローサイトメトリーユニットを操作して、複数のフローサイトメトリー操作を行い、該操作は、各々が精子細胞の混合物を含有する別々の流体の流れを形成し、電磁放射線パルスのビームを用いて流れを照射し、液体の流れ中の照射された精子細胞のＤＮＡ含有量を示すシグナルを生じさせることによって、精子細胞の該混合物から該精子細胞を仕分けることを含み;次いで
    ユニットからの情報を受信し処理してもう一方のユニットに対する１つのユニットの操作の評価を可能にする共通プロセッサーを共有することを含み、該共通プロセッサーは各フローサイトメーターユニットからのシグナルを受信することを特徴とする該方法。
  6. 該複数のフローサイトメトリーユニットが、ジェットインエアー液滴仕分けフローサイトメトリーユニットを含む請求項５記載の方法。
  7. さらに、該複数のフローサイトメトリーを操作して、その分類に基づき、精子細胞の該混合物を仕分けることを特徴とする請求項５記載の方法。
  8. さらに、該フローサイトメトリーユニットを平行に操作することを特徴とする請求項５記載の方法。
  9. 各々が光のパルスビームを用いて、精子細胞を含有する流体の流れを照射することによって、精子細胞の混合物から精子細胞の所望の集団を仕分けることが可能な３以上のフローサイトメトリーユニットを含むシステムを用いて精子細胞を仕分ける方法であって:
    シングルパルスレーザービームを発生させ;
    シングルパルスビームを３以上のパルス光ビームに分け、パルス光ビームをフローサイトメトリーユニットの光学システムに向け;
    各フローサイトメーターユニットで別々の液体の流れを形成し；
    ３以上のパルス光ビームのうちの１つで別々の流れの各々を照射し；
    液体の流れ中の照射された精子細胞のＤＮＡ含有量を示すシグナルを発生させ、；次いで、
    フローサイトメトリーユニットを操作して、精子細胞を仕分けることを特徴とする該方法。
  10. さらに、該サイトメトリーユニットによって使用されるパルスビーム光の量のバランスを取って、１以上のフィルターを用いて該３以上のパルス光ビームのうちの少なくとも１つの強度を弱めることによって各流体の流れを照射することを特徴とする請求項９記載の方法。
  11. 該フローサイトメトリーユニットが共通ハウジングに備え付けられ、該方法が、さらに、ビームを分ける前に、該共通ハウジングに該シングルパルスレーザービームを導くことを特徴とする請求項９記載の方法。
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Families Citing this family (394)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2279574C (en) 1997-01-31 2007-07-24 The Horticulture & Food Research Institute Of New Zealand Ltd. Optical apparatus
US6149867A (en) 1997-12-31 2000-11-21 Xy, Inc. Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm
ES2296398T3 (es) 1998-07-30 2008-04-16 Xy, Inc. Sistema de inseminacion equina artificial no quirurgica.
US7208265B1 (en) 1999-11-24 2007-04-24 Xy, Inc. Method of cryopreserving selected sperm cells
EP2258169B1 (en) 2000-05-09 2019-07-10 Xy, Llc Method for isolating X-chromosome bearing and Y-chromosome bearing populations of spermatozoa
EP1294293A4 (en) * 2000-06-12 2009-11-04 Xy Inc INTEGRATED FLUID MANAGEMENT SYSTEM USING ISOLATED POPULATIONS OF X- AND Y-CHROMOSOME-CARRYING SPERMATOZOES
CA2468772C (en) 2000-11-29 2013-10-29 George E. Seidel System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations
US7713687B2 (en) 2000-11-29 2010-05-11 Xy, Inc. System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations
US20060199260A1 (en) * 2002-05-01 2006-09-07 Zhiyu Zhang Microbioreactor for continuous cell culture
US11243494B2 (en) 2002-07-31 2022-02-08 Abs Global, Inc. Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering
US7699767B2 (en) * 2002-07-31 2010-04-20 Arryx, Inc. Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering
US8486618B2 (en) 2002-08-01 2013-07-16 Xy, Llc Heterogeneous inseminate system
NZ538462A (en) 2002-08-01 2008-06-30 Xy Inc Low pressure sperm cell separation system
US7855078B2 (en) 2002-08-15 2010-12-21 Xy, Llc High resolution flow cytometer
US7169548B2 (en) 2002-09-13 2007-01-30 Xy, Inc. Sperm cell processing and preservation systems
EP2308416B1 (en) 2003-03-28 2015-01-07 Inguran, LLC Apparatus and methods for providing sex-sorted animal sperm
BRPI0408852A (pt) 2003-03-28 2006-04-04 Monsanto Technology Llc processo para a coloração de espermatozóide
AU2004242121B2 (en) * 2003-05-15 2010-06-24 Xy, Llc. Efficient haploid cell sorting for flow cytometer systems
KR101149880B1 (ko) * 2003-08-13 2012-05-24 루미넥스 코포레이션 유세포 분석기식 측정 시스템의 하나 이상의 파라미터의 제어 방법
SG149889A1 (en) 2003-10-30 2009-02-27 Cytonome Inc Multilayer hydrodynamic sheath flow structure
US7998700B2 (en) * 2004-03-29 2011-08-16 Inguran, Llc Use of a composition which regulates oxidation/reduction reactions intracellularly and/or extracellulary in a staining or sorting process
US7892725B2 (en) 2004-03-29 2011-02-22 Inguran, Llc Process for storing a sperm dispersion
JP4413921B2 (ja) * 2004-04-23 2010-02-10 古河電気工業株式会社 検体の解析装置及び検体の解析方法
US8232962B2 (en) 2004-06-21 2012-07-31 Trading Technologies International, Inc. System and method for display management based on user attention inputs
AR049732A1 (es) 2004-07-22 2006-08-30 Monsanto Co Proceso para enriquecer una poblacion de celulas de esperma
WO2006015056A2 (en) * 2004-07-27 2006-02-09 Dakocytomation Denmarks A/S Enhancing flow cytometry discrimination with geometric transformation
US7340957B2 (en) 2004-07-29 2008-03-11 Los Alamos National Security, Llc Ultrasonic analyte concentration and application in flow cytometry
US7355696B2 (en) * 2005-02-01 2008-04-08 Arryx, Inc Method and apparatus for sorting cells
US7113266B1 (en) * 2005-03-30 2006-09-26 Beckman Coulter, Inc. Flow cytometer for differentiating small particles in suspension
ITBO20050481A1 (it) 2005-07-19 2007-01-20 Silicon Biosystems S R L Metodo ed apparato per la manipolazione e/o l'individuazione di particelle
US20070025879A1 (en) * 2005-07-27 2007-02-01 Dakocytomation Denmark A/S Method and apparatus for syringe-based sample introduction within a flow cytometer
US7518723B2 (en) * 2005-09-19 2009-04-14 Jmar Technologies, Inc. Systems and methods for detecting radiation, biotoxin, chemical, and biological warfare agents using a multiple angle light scattering (MALS) instrument
ITBO20050646A1 (it) 2005-10-26 2007-04-27 Silicon Biosystem S R L Metodo ed apparato per la caratterizzazione ed il conteggio di particelle
US8270781B2 (en) 2005-10-28 2012-09-18 The Regents Of The University Of California Apparatus and method for improved optical detection of particles in fluid
US7299135B2 (en) * 2005-11-10 2007-11-20 Idexx Laboratories, Inc. Methods for identifying discrete populations (e.g., clusters) of data within a flow cytometer multi-dimensional data set
US7595874B1 (en) 2006-02-08 2009-09-29 Sciperio, Inc. Method of condensed cell slide preparation and detection of rarely occurring cells on microscope slides
ITCN20060005A1 (it) * 2006-03-22 2007-09-23 Amc Italy Srl Procedimento e apparecchiatura per rilevare il contenuto cromosomico di spermatozoo animali, in particolare ai fini del sessaggio di tali spermatozoi
ITTO20060226A1 (it) 2006-03-27 2007-09-28 Silicon Biosystem S P A Metodo ed apparato per il processamento e o l'analisi e o la selezione di particelle, in particolare particelle biologiche
CA2664456C (en) 2006-09-29 2013-12-31 Guava Technologies, Inc. Differentiation of flow cytometry pulses and applications
US7835000B2 (en) 2006-11-03 2010-11-16 Los Alamos National Security, Llc System and method for measuring particles in a sample stream of a flow cytometer or the like
US20130056398A1 (en) * 2006-12-08 2013-03-07 Visys Nv Apparatus and method for inspecting and sorting a stream of products
BE1017422A3 (nl) * 2006-12-08 2008-09-02 Visys Nv Werkwijze en inrichting voor het inspecteren en sorteren van een productstroom.
US8202733B1 (en) * 2006-12-18 2012-06-19 Shervin Javadi System and method for obtaining a differential flow rate
DE202007002350U1 (de) * 2007-01-19 2008-05-29 Liebherr-Hausgeräte Ochsenhausen GmbH Kühl- und/oder Gefriergerät
BRPI0700624A (pt) * 2007-02-28 2008-10-14 Pedrazzi Cesar Augusto Ferraz processo de manipulação de sêmen
US8101426B2 (en) * 2007-03-02 2012-01-24 Icyt Mission Technology, Inc. System and method for the measurement of multiple fluorescence emissions in a flow cytometry system
JP5519297B2 (ja) * 2007-03-13 2014-06-11 アドヴァンスト リキッド ロジック インコーポレイテッド 吸光度検出を向上させるための液滴アクチュエータの装置、構成および方法
JP5936808B2 (ja) * 2007-03-22 2016-06-22 シンセティック ジェノミクス インコーポレーテッド 嫌気性環境における微生物の区画化された培養のためのシステムおよび方法
ATE538377T1 (de) * 2007-04-02 2012-01-15 Acoustic Cytometry Systems Inc Verfahren zur verbesserten analyse von in einem akustischen feld fokussierten zellen und partikeln
US8290625B2 (en) * 2007-04-04 2012-10-16 Beckman Coulter, Inc. Flow cytometer sorter
US7837040B2 (en) * 2007-04-09 2010-11-23 Los Alamos National Security, Llc Acoustic concentration of particles in fluid flow
US8083068B2 (en) 2007-04-09 2011-12-27 Los Alamos National Security, Llc Apparatus for separating particles utilizing engineered acoustic contrast capture particles
JP5178069B2 (ja) * 2007-06-29 2013-04-10 ベックマン コールター， インコーポレイテッド Ｍｔシステムによる凝集像自動判定方法、装置、プログラムおよび記録媒体
EP2188059B1 (en) * 2007-08-24 2016-05-04 Advanced Liquid Logic, Inc. Bead manipulations on a droplet actuator
KR100864138B1 (ko) * 2007-09-04 2008-10-16 주식회사 노아바이오텍 정자의 고순도 성 분리방법
US7787197B2 (en) * 2007-09-14 2010-08-31 Becton, Dickinson And Company Beam-adjusting optics
KR20100087104A (ko) 2007-09-17 2010-08-03 루미넥스 코포레이션 유동 입자를 식별하는 시스템과 저장매체 및 방법
US20100081862A1 (en) * 2008-10-01 2010-04-01 Timothy James Williams Composition and method to modify sperm function and increase male gender ratio in mammals
AU2008350867B2 (en) * 2007-09-29 2014-08-28 Timothy James Williams Composition and method to modify sperm function and increase male gender ratio in mammals
US8263407B2 (en) 2007-10-24 2012-09-11 Los Alamos National Security, Llc Method for non-contact particle manipulation and control of particle spacing along an axis
US8528406B2 (en) * 2007-10-24 2013-09-10 Los Alamos National Security, LLP Method for non-contact particle manipulation and control of particle spacing along an axis
EP2204643B1 (en) * 2007-10-29 2019-08-21 Sysmex Corporation Cell analysis apparatus and cell analysis method
ITTO20070771A1 (it) * 2007-10-29 2009-04-30 Silicon Biosystems Spa Metodo e apparato per la identificazione e manipolazione di particelle
CN101873893B (zh) * 2007-11-27 2013-09-04 Ei频谱有限责任公司 基于荧光的移液器仪器
US8266951B2 (en) 2007-12-19 2012-09-18 Los Alamos National Security, Llc Particle analysis in an acoustic cytometer
US9594071B2 (en) * 2007-12-21 2017-03-14 Colin G. Hebert Device and method for laser analysis and separation (LAS) of particles
US10281385B2 (en) * 2007-12-21 2019-05-07 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of The Navy Device for laser analysis and separation (LAS) of particles
CN105181407B (zh) * 2008-03-31 2020-06-30 希森美康株式会社 制样装置与制样方法以及细胞分析装置与细胞分析方法
WO2009151624A1 (en) * 2008-06-13 2009-12-17 Xy, Inc. Lubricious microfluidic flow path system
US8004661B2 (en) * 2008-06-30 2011-08-23 Microbix Biosystems Inc. Method and apparatus for sorting cells
WO2010005617A2 (en) 2008-07-11 2010-01-14 Intellicyt Multi-sample particle analyzer system and method for high throughput screening
US8105499B2 (en) * 2008-07-14 2012-01-31 International Business Macines Corporation Transmission electron microscopy sample etching fixture
US7844726B2 (en) 2008-07-28 2010-11-30 Trading Technologies International, Inc. System and method for dynamically managing message flow
DK2316022T3 (en) 2008-08-21 2017-01-16 Xy Llc DEVICE AND METHODS FOR CELL ANALYSIS
US9399215B2 (en) 2012-04-13 2016-07-26 Bio-Rad Laboratories, Inc. Sample holder with a well having a wicking promoter
US8633015B2 (en) * 2008-09-23 2014-01-21 Bio-Rad Laboratories, Inc. Flow-based thermocycling system with thermoelectric cooler
US9417190B2 (en) 2008-09-23 2016-08-16 Bio-Rad Laboratories, Inc. Calibrations and controls for droplet-based assays
WO2011120024A1 (en) 2010-03-25 2011-09-29 Quantalife, Inc. Droplet generation for droplet-based assays
US11130128B2 (en) 2008-09-23 2021-09-28 Bio-Rad Laboratories, Inc. Detection method for a target nucleic acid
US9132394B2 (en) 2008-09-23 2015-09-15 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for detection of spaced droplets
US10512910B2 (en) 2008-09-23 2019-12-24 Bio-Rad Laboratories, Inc. Droplet-based analysis method
US8951939B2 (en) 2011-07-12 2015-02-10 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital assays with multiplexed detection of two or more targets in the same optical channel
US9156010B2 (en) 2008-09-23 2015-10-13 Bio-Rad Laboratories, Inc. Droplet-based assay system
US8709762B2 (en) 2010-03-02 2014-04-29 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for hot-start amplification via a multiple emulsion
US9764322B2 (en) 2008-09-23 2017-09-19 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for generating droplets with pressure monitoring
US9492797B2 (en) 2008-09-23 2016-11-15 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for detection of spaced droplets
US10895575B2 (en) 2008-11-04 2021-01-19 Menarini Silicon Biosystems S.P.A. Method for identification, selection and analysis of tumour cells
EP2199956A1 (en) * 2008-12-18 2010-06-23 Siemens Aktiengesellschaft Method and system for managing results of an analysis process on objects handled along a technical process line
US8557587B2 (en) * 2009-01-07 2013-10-15 Xy, Llc Self-tuning, biologically modeled sorter
US9134221B2 (en) 2009-03-10 2015-09-15 The Regents Of The University Of California Fluidic flow cytometry devices and particle sensing based on signal-encoding
US9645010B2 (en) 2009-03-10 2017-05-09 The Regents Of The University Of California Fluidic flow cytometry devices and methods
US10031061B2 (en) 2009-05-13 2018-07-24 Intellicyt Corporation Flow measurement and control for improved quantification of particles in flow cytometry
US8823943B2 (en) 2009-05-21 2014-09-02 Intellicyt Corporation System and method for separating samples in a continuous flow
EP2267430A1 (de) * 2009-06-24 2010-12-29 Masterrind GmbH Vorrichtung und Verfahren zur Selektion von Partikeln
US8665439B2 (en) * 2009-06-30 2014-03-04 Microbix Biosystems, Inc. Method and apparatus for limiting effects of refraction in cytometry
US20110001963A1 (en) * 2009-07-02 2011-01-06 Durack Gary P System and method for the measurement of multiple emissions from multiple parallel flow channels in a flow cytometry system
TW201105971A (en) * 2009-07-06 2011-02-16 Sony Corp Microfluidic device having onboard tissue or cell sample handling capability
US8778279B2 (en) * 2009-07-06 2014-07-15 Sony Corporation Microfluidic device
WO2011005757A1 (en) * 2009-07-07 2011-01-13 Sony Corporation Microfluidic device adapted for post-centrifugation use with selective sample extraction and methods for its use
CN103335931A (zh) * 2009-07-07 2013-10-02 索尼公司 微流体装置
WO2011005754A1 (en) * 2009-07-08 2011-01-13 Sony Corporation Microfluidic device having a flow channel within a gain medium
US20110020855A1 (en) * 2009-07-21 2011-01-27 Masataka Shinoda Method and apparatus for performing cytometry
JP5446563B2 (ja) * 2009-08-06 2014-03-19 ソニー株式会社 微小粒子分取装置、および該微小粒子分取装置を用いたフローサイトメーター
WO2011028539A1 (en) 2009-09-02 2011-03-10 Quantalife, Inc. System for mixing fluids by coalescence of multiple emulsions
EP2494036A4 (en) * 2009-10-30 2013-08-28 Inguran Llc METHOD AND SYSTEMS FOR REDUCING DNA FRAGMENTATION IN A POPULATION OF SPERM CELLS
US9057676B2 (en) 2010-02-05 2015-06-16 Cytonome/St, Llc Multiple flow channel particle analysis system
US8399198B2 (en) 2010-03-02 2013-03-19 Bio-Rad Laboratories, Inc. Assays with droplets transformed into capsules
US20110223587A1 (en) * 2010-03-11 2011-09-15 Schulman Joseph D Optical particle characterization system
US20110223586A1 (en) * 2010-03-11 2011-09-15 David Karabinus Optical particle characterization system
JP2013524169A (ja) 2010-03-25 2013-06-17 クァンタライフ・インコーポレーテッド 液滴によるアッセイ用の検出システム
EP2556170A4 (en) 2010-03-25 2014-01-01 Quantalife Inc TRAPPING TRANSPORT AND DETECTION SYSTEM
JP5646196B2 (ja) 2010-03-30 2014-12-24 武蔵エンジニアリング株式会社 吐出装置および液体分注装置並びに液体分注方法
CA2794934A1 (en) 2010-04-01 2011-10-06 Inguran, Llc Methods and systems for reducing dna fragmentation in a processed sperm sample
US9470617B2 (en) * 2010-04-07 2016-10-18 Sony Corporation Flow cytometry apparatus
JP5437148B2 (ja) * 2010-04-23 2014-03-12 ベイバイオサイエンス株式会社 フローサイトメータおよびセルソータ
JP5841315B2 (ja) 2010-04-28 2016-01-13 ソニー株式会社 微小粒子分析装置
EP2579792B1 (en) 2010-06-09 2016-08-10 Xy, Llc A heterogeneous inseminate system
CN103109186B (zh) * 2010-06-30 2016-06-22 安派科生物医学科技有限公司 疾病检测仪
US8720379B2 (en) 2010-08-12 2014-05-13 St Reproductive Technologies, Llc Shipping containers for livestock
BR112013002799A2 (pt) 2010-08-05 2016-10-25 St Reproductive Tech Llc contêineres de embarque e métodos para transportar animais
US9102258B2 (en) 2010-08-05 2015-08-11 St Reproductive Technologies, Llc Floating partition, loft and troughs for a livestock shipping container
US9340762B2 (en) 2010-08-20 2016-05-17 Yu Sun Method for automated sperm manipulation and device for holding sperm and oocytes
EP2613889B1 (en) * 2010-09-07 2017-09-20 University of Limerick A liquid droplet dispenser
WO2012054904A2 (en) 2010-10-21 2012-04-26 The Regents Of The University Of California Microfluidics with wirelessly powered electronic circuits
CN103429331B (zh) 2010-11-01 2016-09-28 伯乐生命医学产品有限公司 用于形成乳液的系统
WO2012063687A1 (ja) * 2010-11-09 2012-05-18 国立大学法人広島大学 ヒト凍結精子用希釈液、ヒト凍結精子の希釈方法、及び、ヒトの体外受精用精液又は人工授精用精液の調整方法
US8941062B2 (en) * 2010-11-16 2015-01-27 1087 Systems, Inc. System for identifying and sorting living cells
JP2014503195A (ja) * 2010-11-16 2014-02-13 １０８７ システムズ インコーポレイテッド 生細胞の識別および選別用システム
US20120225475A1 (en) 2010-11-16 2012-09-06 1087 Systems, Inc. Cytometry system with quantum cascade laser source, acoustic detector, and micro-fluidic cell handling system configured for inspection of individual cells
US10908066B2 (en) 2010-11-16 2021-02-02 1087 Systems, Inc. Use of vibrational spectroscopy for microfluidic liquid measurement
US8797395B2 (en) * 2010-12-17 2014-08-05 General Electric Company Optical system for inspecting porous substrates
WO2012094325A2 (en) * 2011-01-03 2012-07-12 Cytonome/St. Llc Method and apparatus for monitoring and optimizing particle sorting
US8618510B2 (en) * 2011-01-28 2013-12-31 The Regents Of The University Of Colorado Optically integrated microfluidic cytometers for high throughput screening of photophysical properties of cells or particles
US8705031B2 (en) 2011-02-04 2014-04-22 Cytonome/St, Llc Particle sorting apparatus and method
EP2676121A1 (en) * 2011-02-15 2013-12-25 Microbix Biosystems Inc. Methods, systems, and apparatus for performing flow cytometry
SG193283A1 (en) 2011-03-03 2013-10-30 Life Technologies Corp Sampling probes, systems, apparatuses, and methods
EP2686449B1 (en) 2011-03-18 2020-11-18 Bio-Rad Laboratories, Inc. Multiplexed digital assays with combinatorial use of signals
US8990047B2 (en) * 2011-03-21 2015-03-24 Becton, Dickinson And Company Neighborhood thresholding in mixed model density gating
EP2692850A4 (en) * 2011-03-28 2015-01-21 Panasonic Healthcare Co Ltd DISTRIBUTION DEVICE AND DISTRIBUTION SYSTEM
WO2012129591A1 (en) * 2011-03-30 2012-10-04 Empire Technology Development Llc Material sorting system and method of sorting material
EP2702175B1 (en) 2011-04-25 2018-08-08 Bio-Rad Laboratories, Inc. Methods and compositions for nucleic acid analysis
CN103649294B (zh) * 2011-04-29 2016-05-18 贝克顿·迪金森公司 多路分类系统和方法
US9200334B2 (en) 2011-04-29 2015-12-01 Becton, Dickinson And Company Cell sorter system and method
CN106995780B (zh) * 2011-05-05 2019-11-22 安派科生物医学科技有限公司 肿瘤细胞检测仪
US20120301869A1 (en) * 2011-05-25 2012-11-29 Inguran, Llc Particle separation devices, methods and systems
US9781919B2 (en) 2011-06-01 2017-10-10 Inguran, Llc Compositions and methods for improving the quality of processed sperm
NZ764002A (en) 2011-06-01 2022-12-23 Inguran Llc Compositions and methods for improving the quality of processed sperm
JP2012251881A (ja) * 2011-06-03 2012-12-20 Bay Bioscience Kk 液体フローに含まれる生物学的粒子を分析するシステム
US9095414B2 (en) * 2011-06-24 2015-08-04 The Regents Of The University Of California Nonlinear optical photodynamic therapy (NLO-PDT) of the cornea
JP2013024629A (ja) * 2011-07-19 2013-02-04 Sysmex Corp フローサイトメータ
EP2737089B1 (en) 2011-07-29 2017-09-06 Bio-rad Laboratories, Inc. Library characterization by digital assay
US20130046153A1 (en) 2011-08-16 2013-02-21 Elwha LLC, a limited liability company of the State of Delaware Systematic distillation of status data relating to regimen compliance
WO2013028947A1 (en) 2011-08-25 2013-02-28 Sony Corporation Characterization of motion-related error in a stream of moving micro-entities
WO2013049631A1 (en) 2011-09-30 2013-04-04 Inguran, Llc Sperm staining and sorting methods
DE102011115467A1 (de) * 2011-10-10 2013-04-11 Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. Vorrichtung und Verfahren zur Druck-Kryokonservierung einer biologischen Probe
CA2853093C (en) 2011-10-21 2020-01-14 Acea Biosciences, Inc. System and method for detecting multiple-excitation-induced light in a flow channel
ITTO20110990A1 (it) 2011-10-28 2013-04-29 Silicon Biosystems Spa Metodo ed apparato per l'analisi ottica di particelle a basse temperature
ES2865108T3 (es) * 2011-12-20 2021-10-15 Becton Dickinson Co Método, sistema, medio de almacenamiento legible por ordenador y clasificador de células para mejorar el rendimiento de partículas clasificadas
ITBO20110766A1 (it) 2011-12-28 2013-06-29 Silicon Biosystems Spa Dispositivi, apparato, kit e metodo per il trattamento di un campione biologico
WO2013111130A1 (en) 2012-01-23 2013-08-01 Estar Technologies Ltd A system and method for obtaining a cellular sample enriched with defined cells such as platelet rich plasma(prp)
US20130199298A1 (en) * 2012-02-03 2013-08-08 Microsonic Systems Inc. Apparatus for automation of fluid sample processing using ultrasonic waves
US9663826B2 (en) 2012-02-15 2017-05-30 The Translational Genomics Research Institute System and method of genomic profiling
CN104350374B (zh) 2012-02-29 2018-04-27 富鲁达公司 用于使用微流体的多个单细胞捕获和处理的方法、系统和设备
MY154507A (en) 2012-03-19 2015-06-22 Malaysian Palm Oil Board Gene Controlling Shell Phenotype in Palm
JP5924077B2 (ja) * 2012-03-30 2016-05-25 ソニー株式会社 微小粒子分取装置及び微小粒子分取装置における軌道方向判定方法
JP5601424B2 (ja) 2012-03-30 2014-10-08 ソニー株式会社 微小粒子分取装置及び該装置における流体ストリーム最適化方法
US9433195B2 (en) 2012-06-06 2016-09-06 Inguran, Llc Methods for increasing genetic progress in a line or breed of swine using sex-selected sperm cells
US9888990B2 (en) 2012-06-06 2018-02-13 Inguran, Llc Methods for use of sex sorted semen to improve genetic management in swine
JP2013255447A (ja) * 2012-06-12 2013-12-26 Nippon Koden Corp 細胞単離装置
EP2861957B1 (en) * 2012-06-14 2018-05-09 Bio-rad Laboratories, Inc. Flow rate balanced, dynamically adjustable sheath delivery system for flow cytometry
CN104471504B (zh) * 2012-06-22 2017-10-27 生物辐射实验室股份有限公司 用于流式细胞仪的流体混合及冲洗系统及方法
US9222874B2 (en) * 2012-06-27 2015-12-29 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Systems and methods for individually trapping particles from air and measuring the optical spectra or other properties of individual trapped particles
WO2014006193A1 (en) * 2012-07-06 2014-01-09 ETH Zürich Method for controlling an interaction between droplet targets and a laser and apparatus for conducting said method
JP2014020918A (ja) * 2012-07-18 2014-02-03 Sony Corp 微小粒子測定装置及び微小粒子分析方法
EA030193B1 (ru) 2012-07-27 2018-07-31 Инджендер Текнолоджиз Лимитед Способ и система для ориентирования и/или сортировки микрофлюидных частиц
US10379026B2 (en) 2012-08-29 2019-08-13 Inguran, Llc Cell processing using magnetic particles
DK3326721T3 (da) 2012-08-29 2019-11-25 Inguran Llc Magnetisk fjernelse eller identificering af beskadigede eller kompromitterede spermatozoer
JP6016547B2 (ja) * 2012-09-19 2016-10-26 株式会社日立製作所 付着物検査装置
CA2885170C (en) 2012-09-19 2019-02-19 Inguran, Llc Nozzle assembly for a flow cytometer system and methods of manufacture
US11668640B2 (en) * 2015-03-06 2023-06-06 Inguran, Llc Nozzle assembly for a flow cytometry system and methods of manufacture
DK2898057T3 (da) 2012-09-19 2022-10-10 Inguran Llc Strømningscytometersystem med en affaset dysespids
TR201909835T4 (tr) * 2012-10-05 2019-07-22 Inguran Llc Cinsiyet ayıklama için spermlere muamele etme yöntemleri.
US10620213B2 (en) 2012-10-05 2020-04-14 Inguran, Llc High pressure sperm sorting and flow cytometer methods
US8760658B2 (en) * 2012-10-12 2014-06-24 Perkinelmer Health Sciences, Inc. Flow cell modules and liquid sample analyzers and methods including same
CN110579435B (zh) 2012-10-15 2023-09-26 纳诺赛莱克特生物医药股份有限公司 颗粒分选的系统、设备和方法
JP6065527B2 (ja) * 2012-11-08 2017-01-25 ソニー株式会社 微小粒子分取装置及び微小粒子分取方法
US10184929B2 (en) 2012-12-16 2019-01-22 Satish Deshpande System to distinguish between X sperm and Y sperm
US20150168297A1 (en) * 2013-12-15 2015-06-18 Satish Deshpande System to Distinguish between X Sperm and Y Sperm
US10467691B2 (en) 2012-12-31 2019-11-05 Trading Technologies International, Inc. User definable prioritization of market information
EP3910318A1 (en) 2013-01-28 2021-11-17 Sony Group Corporation Microparticle sorting device, and method and program for sorting microparticles
EP2951643B1 (en) * 2013-01-30 2019-12-25 Kla-Tencor Corporation Euv light source using cryogenic droplet targets in mask inspection
US9207166B2 (en) * 2013-01-31 2015-12-08 Honeywell International Inc. Micro-molded cytometer cartridge with integrated optics
US10190963B2 (en) 2013-02-01 2019-01-29 Becton, Dickinson And Company Methods and systems for assessing sample behavior in a flow cytometer
WO2014153107A1 (en) 2013-03-14 2014-09-25 Cytonome/St, Llc Hydrodynamic focusing apparatus and methods
EP4332546A2 (en) 2013-03-14 2024-03-06 Cytonome/ST, LLC Operatorless particle processing systems and methods
EP4134656A1 (en) 2013-03-14 2023-02-15 Cytonome/ST, LLC Assemblies and methods for reducing optical crosstalk in particle processing systems
US10371622B2 (en) * 2013-03-14 2019-08-06 Inguran, Llc Device for high throughput sperm sorting
US10662408B2 (en) * 2013-03-14 2020-05-26 Inguran, Llc Methods for high throughput sperm sorting
US10190960B2 (en) * 2013-03-14 2019-01-29 Cytonome/St, Llc Micro-lens systems for particle processing systems
US9757726B2 (en) 2013-03-14 2017-09-12 Inguran, Llc System for high throughput sperm sorting
MX2015012550A (es) * 2013-03-14 2016-02-10 Inguran Llc Aparatos y metodos para la clasificacion con alta capacidad de procesamiento de espermatozoides.
US9857361B2 (en) * 2013-03-15 2018-01-02 Iris International, Inc. Flowcell, sheath fluid, and autofocus systems and methods for particle analysis in urine samples
US10032270B2 (en) * 2013-03-15 2018-07-24 Richard H. Turner System and methods for the in vitro detection of particles and soluble chemical entities in body fluids
JP5892967B2 (ja) * 2013-03-29 2016-03-23 シスメックス株式会社 細胞分析装置、細胞測定装置の管理方法およびコンピュータプログラム
BR112015022073B1 (pt) 2013-04-12 2020-10-06 Becton, Dickinson And Company Organização automatizada para classificação de célula
US10486152B2 (en) 2013-04-19 2019-11-26 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Non-contact micro droplet dispenser and method
JP6281193B2 (ja) * 2013-05-30 2018-02-21 ソニー株式会社 レーザー走査型顕微鏡システム
US8961904B2 (en) 2013-07-16 2015-02-24 Premium Genetics (Uk) Ltd. Microfluidic chip
FR3009084B1 (fr) * 2013-07-23 2015-08-07 Commissariat Energie Atomique Procede pour trier des cellules et dispositif associe.
WO2015023916A1 (en) 2013-08-16 2015-02-19 Bio-Rad Laboratories, Inc. Timing and/or phase adjustment of the separation and/or charging of drops from a fluid stream in a flow cytometer
CN105829865B (zh) 2013-09-05 2018-12-04 伯乐生命医学产品有限公司 按需的微粒分配系统
US10343165B2 (en) 2013-09-05 2019-07-09 Bio-Rad Laboratories, Inc. On-demand particle dispensing system
CN103529036A (zh) * 2013-10-08 2014-01-22 南京师范大学 一种鉴别杂交黄颡鱼幼鱼性别的方法
WO2015056516A1 (ja) 2013-10-16 2015-04-23 ソニー株式会社 粒子分取装置、粒子分取方法及びプログラム
JP6136843B2 (ja) * 2013-10-17 2017-05-31 ソニー株式会社 粒子分取装置、粒子分取方法及びプログラム
US11796449B2 (en) 2013-10-30 2023-10-24 Abs Global, Inc. Microfluidic system and method with focused energy apparatus
CN115266543A (zh) 2013-10-30 2022-11-01 Abs全球公司 识别对象的装置及相关方法
US10261080B2 (en) * 2013-11-19 2019-04-16 Acea Biosciences, Inc. Optical detection system for flow cytometer, flow cytometer system and methods of use
CN105917211B (zh) 2013-11-19 2019-03-19 艾森生物科学公司 用于流式细胞仪的光学引擎、流式细胞仪系统及使用方法
US10460387B2 (en) 2013-12-18 2019-10-29 Trading Technologies International, Inc. Dynamic information configuration and display
CN104749086B (zh) * 2013-12-31 2018-12-18 深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司 多参考通道脉冲识别方法、装置及粒子分析仪
CN105980831B (zh) 2014-02-13 2021-01-12 索尼公司 粒子分捡装置、粒子分捡方法、程序以及粒子分捡系统
JP6102783B2 (ja) * 2014-02-14 2017-03-29 ソニー株式会社 粒子分取装置、粒子分取方法及びプログラム
JP2015161719A (ja) * 2014-02-26 2015-09-07 ソニー株式会社 レーザー走査型顕微鏡システム及びサンプリング装置
US9880085B2 (en) * 2014-03-21 2018-01-30 Intellicyt Corporation Flow cytometer system including flow cytometer, autosampler and system integration structure
MY193347A (en) 2014-05-02 2022-10-06 Malaysian Palm Oil Board Mantle phenotype detection in palm
JP6328493B2 (ja) * 2014-05-28 2018-05-23 東京エレクトロン株式会社 測定装置及び測定方法
JP6313123B2 (ja) * 2014-05-28 2018-04-18 東京エレクトロン株式会社 測定装置及び測定方法
WO2015187783A1 (en) 2014-06-05 2015-12-10 Virocyt, Inc. Flow cytometer signal peak identification employing dynamic thresholding
US9869628B2 (en) 2014-06-25 2018-01-16 Acea Biosciences, Inc. Methods of collecting cells from multi-well plates for use in flow cytometry
FR3022998B1 (fr) * 2014-06-30 2016-07-15 Alain Rousseau Techniques & Innovations Arteion Systeme et ensemble de cytometrie en flux, dispositif d’analyse comprenant un tel ensemble de cytometrie et ensemble comprenant un tel systeme de cytometrie
US9816626B1 (en) 2014-07-15 2017-11-14 Davis & Davis Company Method and device for adapting an actuator to a valve
FR3024738B1 (fr) * 2014-08-11 2018-06-15 Genes Diffusion Dispostif et procede de selection de cellules eucaryotes dans un canal de transport par alteration des cellules eucaryotes au moyen d'un rayonnemement electromagnetique
WO2016028907A1 (en) * 2014-08-20 2016-02-25 Bio-Rad Laboratories, Inc. Optofluidic sorter
JP6657625B2 (ja) 2014-09-05 2020-03-04 ソニー株式会社 液滴分取装置、液滴分取方法及びプログラム
CA2905670A1 (en) * 2014-09-26 2016-03-26 Inguran, Llc Sex sorted sperm demonstrating a dose response and methods of producing sex sorted sperm demonstrating a dose response
US10564088B2 (en) 2014-10-09 2020-02-18 Kinetic River Corp. Particle analysis and sorting apparatus and methods
US11740174B2 (en) 2014-10-09 2023-08-29 Kinetic River Corp. Apparatus and methods for particle analysis and autofluorescence discrimination
CA2965138A1 (en) * 2014-10-20 2016-04-28 University Of Utah Research Foundation Tissue sample processing system and associated methods
WO2016063364A1 (ja) * 2014-10-22 2016-04-28 株式会社日立ハイテクノロジーズ 細胞計測機構及びそれを有する細胞培養装置並びに細胞計測方法
CA3210347A1 (en) * 2014-11-20 2016-05-26 Inguran, Llc Low sugar sperm media and compositions
AU2015357516A1 (en) 2014-12-05 2017-06-15 Inguran, Llc Cell processing using magnetic particles
KR102564360B1 (ko) 2015-02-09 2023-08-04 슬링샷 바이오사이언시즈 인코포레이티드 튜닝가능한 광 특성을 갖는 하이드로겔 입자 및 이를 사용하기 위한 방법
WO2016132222A2 (en) 2015-02-19 2016-08-25 Premium Genetics (Uk) Ltd. Scanning infrared measurement system
US10866182B2 (en) 2015-03-10 2020-12-15 Microbix Biosystems Inc. Method and optical system for saturated illumination of analytes by a number of beams
WO2016158443A1 (ja) * 2015-03-27 2016-10-06 東京エレクトロン株式会社 微粒子計測装置
WO2016161109A1 (en) * 2015-03-31 2016-10-06 The Regents Of The University Of California System and method for tunable patterning and assembly of particles via acoustophoresis
US10444141B2 (en) * 2015-04-02 2019-10-15 Carefusion 303, Inc. Systems and methods for tracking particles in a fluid flow
WO2016161292A1 (en) * 2015-04-02 2016-10-06 Particle Measuring Systems, Inc. Laser noise detection and mitigation in particle counting instruments
US10145776B2 (en) 2015-04-13 2018-12-04 Massachusetts Institute Of Technology Fluid analysis using digital imagery
EP3304040B1 (en) * 2015-05-28 2023-04-19 Accellix Ltd System and apparatus for blind deconvolution of flow cytometer particle emission
WO2016195918A1 (en) * 2015-06-03 2016-12-08 Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University Point-of-care fluorescent immunoassay for identifying biomarkers in patient biofluid samples
ES2898508T3 (es) * 2015-06-22 2022-03-07 Brigham & Womens Hospital Inc Evaluación domiciliaria de la calidad de muestras de semen
JP6767981B2 (ja) * 2015-08-26 2020-10-14 倉敷紡績株式会社 細胞測定方法
JP5943366B1 (ja) * 2015-08-28 2016-07-05 株式会社サタケ 光学ユニットを備えた装置
WO2017046988A1 (en) 2015-09-18 2017-03-23 Sony Corporation Information processing apparatus, information processing method, and information processing system
JP6790490B2 (ja) 2015-09-18 2020-11-25 ソニー株式会社 情報処理装置、情報処理方法及び情報処理システム
US10302545B2 (en) 2015-10-05 2019-05-28 Becton, Dickinson And Company Automated drop delay calculation
US9573038B1 (en) * 2015-10-08 2017-02-21 Waterway Plastics Variable speed swim spa system
ITUB20154668A1 (it) * 2015-10-14 2017-04-14 Mario Goisis Dispositivo per la filtrazione del grasso estratto con procedure chirurgiche di liposuzione
JP6729597B2 (ja) 2015-10-19 2020-07-22 ソニー株式会社 画像処理装置、微小粒子分取装置及び画像処理方法
USD811616S1 (en) 2015-12-18 2018-02-27 Abbott Laboratories Tube rack
USD793473S1 (en) 2015-12-18 2017-08-01 Abbott Laboratories Print tape cartridge
USD802787S1 (en) 2015-12-18 2017-11-14 Abbott Laboratories Slide carrier
USD812244S1 (en) 2015-12-18 2018-03-06 Abbott Laboratories Tube rack
USD782695S1 (en) 2015-12-18 2017-03-28 Abbott Laboratories Slide carrier
USD799055S1 (en) 2015-12-18 2017-10-03 Abbott Laboratories Smear tape cartridge
USD799057S1 (en) 2015-12-18 2017-10-03 Abbott Laboratories Slide rack
USD782064S1 (en) 2015-12-18 2017-03-21 Abbott Laboratories Tube rack
CN108474727B (zh) * 2015-12-23 2021-10-01 西门子保健有限责任公司 用于分析在待检测液体中的颗粒的流动室
CN108474730A (zh) * 2016-01-22 2018-08-31 索尼公司 微粒测量设备、信息处理设备、以及信息处理方法
JP6555363B2 (ja) 2016-01-26 2019-08-07 株式会社リコー 液滴形成装置、分注装置、方法
USD799058S1 (en) 2016-02-18 2017-10-03 Abbott Laboratories Slide caddy
TWI601947B (zh) * 2016-04-14 2017-10-11 Ce Biotechnology Inc Biological particle capture and capture system and method
WO2017180325A1 (en) 2016-04-15 2017-10-19 Becton, Dickinson And Company Enclosed droplet sorter and methods of using the same
CN115639134A (zh) 2016-06-10 2023-01-24 加利福尼亚大学董事会 基于图像的细胞分选系统和方法
CN109313119B (zh) * 2016-06-20 2021-11-02 普莱尔股份公司 用于检测和/或表征流体携带的颗粒的装置和方法
DE102016211038A1 (de) 2016-06-21 2017-12-21 Cytena Gmbh Vorrichtung und Verfahren zum Detektieren von Zellen oder Partikeln in einem Fluidbehälter
JP6686800B2 (ja) * 2016-08-31 2020-04-22 ウシオ電機株式会社 光学測定器
CN107884319B (zh) * 2016-09-30 2023-05-02 日本电气株式会社 用于对粉尘传感器进行标定的系统和方法
WO2018089953A1 (en) 2016-11-14 2018-05-17 Orca Biosystems, Inc. Methods and apparatuses for sorting target particles
US11577366B2 (en) 2016-12-12 2023-02-14 Omax Corporation Recirculation of wet abrasive material in abrasive waterjet systems and related technology
CN108205337A (zh) * 2016-12-19 2018-06-26 广州康昕瑞基因健康科技有限公司 混匀仪的保温结构
JP6706689B2 (ja) * 2016-12-28 2020-06-10 株式会社日立製作所 超音波計測装置及び超音波計測方法
FR3061910A1 (fr) 2017-01-18 2018-07-20 Genes Diffusion Dispostif et procede de discrimination de spermatozoides
EP3351926A1 (en) * 2017-01-18 2018-07-25 Hifibio Method for analyzing and selecting a specific droplet among a plurality of droplets and associated apparatus
CA3210334A1 (en) * 2017-01-20 2018-07-26 Inguran, Llc Sperm processing method, apparatus and related media compositions
USD869676S1 (en) * 2017-03-28 2019-12-10 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module
USD868991S1 (en) * 2017-03-28 2019-12-03 Becton, Dickinson And Company Register block
KR102585276B1 (ko) 2017-03-31 2023-10-05 라이프 테크놀로지스 코포레이션 이미징 유세포 분석을 위한 장치, 시스템, 및 방법
CN107063977A (zh) * 2017-04-23 2017-08-18 湖南乾康科技有限公司 一种多通道计数池
CN117143960A (zh) 2017-05-18 2023-12-01 10X基因组学有限公司 用于分选液滴和珠的方法和系统
US10544413B2 (en) 2017-05-18 2020-01-28 10X Genomics, Inc. Methods and systems for sorting droplets and beads
JP7088177B2 (ja) * 2017-05-24 2022-06-21 ソニーグループ株式会社 微小粒子の吸引条件の最適化方法及び微小粒子分取装置
RU177494U1 (ru) * 2017-07-14 2018-02-28 Общество с ограниченной ответственностью "Фармпласт" Пистолет-дозатор для искусственного осеменения птиц и домашних животных
RU2727679C2 (ru) * 2017-07-17 2020-07-22 Ингуран, Ллк Установка и способы для высокопроизводительной сортировки спермы
CN110945343B (zh) * 2017-07-19 2023-01-13 英格朗公司 分析仪器和产生精子群体的方法
US10558001B2 (en) * 2017-07-25 2020-02-11 Canon U.S.A., Inc. Optical alignment of fiber-optic rotary joint assembly
CN107276330A (zh) * 2017-08-01 2017-10-20 安徽达来电机有限公司 一种电机组装用模具
JP7010293B2 (ja) 2017-08-08 2022-01-26 ソニーグループ株式会社 情報処理装置、情報処理方法及びプログラム
US10610865B2 (en) 2017-08-22 2020-04-07 10X Genomics, Inc. Droplet forming devices and system with differential surface properties
US10069027B1 (en) 2017-09-15 2018-09-04 Premium Genetics (Uk) Ltd Cytometer sperm sex sensing apparatus with an avalanche photodiode
US11204310B2 (en) 2017-09-21 2021-12-21 Bit Group France Optical flow cytometer for epi fluorescence measurement
EP3687416A1 (en) 2017-09-29 2020-08-05 Nanovare SAS Devices and methods for analysis of male infertility
WO2019083852A1 (en) 2017-10-26 2019-05-02 10X Genomics, Inc. MICROFLUIDIC CHANNEL NETWORKS FOR PARTITIONING
GB201721824D0 (en) * 2017-12-22 2018-02-07 Asymptote Ltd Apparatus and methods relating to freezing at least part of a biological sample
USD882817S1 (en) 2018-01-30 2020-04-28 Becton, Dickinson And Company Sample container
USD864415S1 (en) 2018-01-30 2019-10-22 Becton, Dickinson And Company Particle sorting system
USD872296S1 (en) * 2018-01-30 2020-01-07 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module
USD876668S1 (en) 2018-01-30 2020-02-25 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module mount
US11561162B2 (en) * 2018-03-19 2023-01-24 Sony Corporation Information processing device, information processing system, and information processing method
US10591400B2 (en) 2018-03-29 2020-03-17 Sony Corporation Micro particle analyzer and micro particle analysis method
US11441997B2 (en) 2018-03-30 2022-09-13 Idexx Laboratories, Inc. Quality control for point-of-care diagnostic systems
WO2019199852A1 (en) * 2018-04-09 2019-10-17 Inguran, Llc Improved sperm nuclei and methods of their manufacture and use
WO2020013903A2 (en) * 2018-04-25 2020-01-16 Engender Technologies Ltd. Systems, devices and methods associated with microfluidic systems
US10914671B2 (en) 2018-04-27 2021-02-09 Becton, Dickinson And Company Flow cytometers having enclosed droplet sorters with controlled aerosol content and methods of using the same
WO2019209713A1 (en) * 2018-04-27 2019-10-31 Becton, Dickinson And Company Collection systems for flow cytometrically sorted samples and methods of using the same
US11331670B2 (en) 2018-05-23 2022-05-17 Abs Global, Inc. Systems and methods for particle focusing in microchannels
FR3081292B1 (fr) * 2018-05-24 2020-06-05 Imv Technologies Dispositif de collecte de semence animale
CN108841717B (zh) * 2018-05-31 2021-06-29 张艳 一种冷冻卵细胞的解冻装置
US11427804B2 (en) 2018-06-15 2022-08-30 Abs Global, Inc. Apparatus and method for cell kill confirmation
JP7076300B2 (ja) * 2018-06-26 2022-05-27 マークテック株式会社 紫外線探傷灯
US11002915B2 (en) * 2018-06-29 2021-05-11 Taiwan Semiconductor Manufacturing Co., Ltd. Fiber-to-chip grating coupler for photonic circuits
US11911553B2 (en) * 2018-07-06 2024-02-27 Fenwal, Inc. Systems and methods for concentrating cells with a syringe and a centrifuge
BR112021000339A2 (pt) * 2018-07-10 2021-04-06 Gerrit Jan Van Den Engh Sistema, aparelho e método para iluminação fora do eixo em citometria de fluxo
EP3842771A4 (en) * 2018-08-22 2022-05-11 Hitachi High-Tech Corporation AUTOMATIC ANALYZER AND OPTICAL MEASUREMENT PROCEDURE
JP7338336B2 (ja) * 2018-09-10 2023-09-05 ソニーグループ株式会社 微小粒子分取装置、細胞治療薬製造装置、微小粒子分取方法、及びプログラム
US10908065B2 (en) * 2018-09-17 2021-02-02 Inguran, Llc Light collection from objects within a fluid column
JP7437393B2 (ja) * 2018-10-17 2024-02-22 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 粒子分析器のための適応ソーティング
WO2020091866A1 (en) 2018-10-30 2020-05-07 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module with alignment window, systems and methods of use thereof
WO2020112141A1 (en) * 2018-11-30 2020-06-04 Halliburton Energy Services, Inc. Flow rate management for improved recovery
WO2020128561A1 (en) * 2018-12-21 2020-06-25 Premium Genetics (Uk) Ltd. System and methods for sub-population identification
CN109819955B (zh) * 2019-01-02 2022-03-01 北京农业智能装备技术研究中心 桨叶组件及航空雾化系统
AU2020207365A1 (en) 2019-01-11 2021-06-03 Becton, Dickinson And Company Optimized sorting gates
US11137337B2 (en) 2019-01-21 2021-10-05 Essen Instruments, Inc. Flow cytometry with data analysis for optimized dilution of fluid samples for flow cytometry investigation
WO2020163023A1 (en) * 2019-02-08 2020-08-13 Becton, Dickinson And Company Droplet sorting decision modules, systems and methods of use thereof
EP3698871A1 (en) * 2019-02-19 2020-08-26 Gottfried Wilhelm Leibniz Universität Hannover Laser based sorting of droplets in microfluidic streams
CN113498362B (zh) * 2019-02-27 2023-01-20 京瓷株式会社 粒子分离测量设备以及粒子分离测量装置
JP2020148830A (ja) * 2019-03-11 2020-09-17 ルネサスエレクトロニクス株式会社 半導体装置およびその製造方法
WO2020191064A1 (en) * 2019-03-19 2020-09-24 Inguran, Llc Method for improved sperm cell populations
US20220404351A1 (en) * 2019-03-22 2022-12-22 Kaya17 Inc. System and method for detecting presence of a target bioparticle in a sample via a vertical flow assay
US10777049B1 (en) * 2019-03-29 2020-09-15 Honeywell International Inc. Strobes and speaker-strobes for a mass notification system
BR112021020390A2 (pt) 2019-04-18 2022-01-18 Abs Global Inc Sistema de distribuição de crioprotetor, sistema de criopreservação para distribuir um crioprotetor a um espécime biológico, método para distribuir um crioprotetor a um espécime biológico, sistema de distribuição e método para preparar um espécime biológico para criopreservação
EP3959578A4 (en) * 2019-04-24 2022-12-21 Bennubio Inc. POSITION ASSISTED NEGATIVE PARTICLE REJECTION (PANR) FOR SORTING AND ENRICHING TARGET CELLS OF INTEREST
CN110231682B (zh) * 2019-05-09 2021-07-27 上海大学 一种用于神经活动调控的光电光纤及制作方法
CN110187126A (zh) * 2019-05-29 2019-08-30 中国农业大学 Scamp1蛋白在鉴定哺乳动物精子性别中的应用
US11513114B2 (en) * 2019-05-29 2022-11-29 Abs Global, Inc. Kill event optimization
CN110465339B (zh) * 2019-09-03 2021-02-09 浙江大学 一种流固两相输运中颗粒定位的方法
CA3151587A1 (en) * 2019-10-04 2021-04-08 Benjamin RENQUIST Automated organism sorting device and method of use
CN111080401A (zh) * 2019-11-25 2020-04-28 苏宁云计算有限公司 一种年龄估计方法及装置
CN111010538B (zh) * 2019-12-06 2021-04-23 吕衍荣 风杯式自洁高空抛物监控摄像头
CN111050129B (zh) * 2019-12-06 2021-06-22 深圳市智慧仔物联有限公司 一种高空抛物监控摄像头
CN111037814B (zh) * 2020-01-07 2021-08-03 吉林大学 一种智能高效硫化压力机及其控制方法
US11628439B2 (en) 2020-01-13 2023-04-18 Abs Global, Inc. Single-sheath microfluidic chip
JP2023511132A (ja) 2020-01-24 2023-03-16 スリングショット バイオサイエンシーズ， インコーポレイテッド 細胞様較正粒子のための組成物および方法
US11709116B2 (en) 2020-02-04 2023-07-25 Sartorius Bioanalytical Instruments, Inc. Liquid flourescent dye concentrate for flow cytometry evaluation of virus-size particles and related products and methods
US20210243942A1 (en) * 2020-02-11 2021-08-12 Tsi Incorporated Photoelectric sensor for seed dispensing system
CN111307695B (zh) * 2020-03-11 2022-06-14 深圳大学 一种用于细胞计数的激光散射分类装置的校验装置及方法
US11584662B2 (en) 2020-03-16 2023-02-21 Inguran, Llc Systems and method for correction of positionally dependent electromagnetic radiation detected from objects within a fluid column
CN111220588B (zh) * 2020-03-24 2023-05-16 哈尔滨工业大学（威海） 一种基于油膜荧光亮度的流场辐聚辐散测量方法
CN111500530A (zh) * 2020-04-30 2020-08-07 延安大学 一种通用型动物精子分选方法及x精子质控方法
CN115485556A (zh) 2020-05-04 2022-12-16 弹弓生物科学公司 用于多路复用测定的被动光学条形码化的组合物和方法
CN111537697B (zh) * 2020-05-12 2022-03-11 西南石油大学 一种超临界水与页岩反应的室内模拟装置和方法
CN111521547A (zh) * 2020-05-13 2020-08-11 洹仪科技(上海)有限公司 一种颗粒分析分选装置及方法
WO2021236466A1 (en) * 2020-05-19 2021-11-25 Life Technologies Corporation Nozzle sealing and unclog station for a flow cytometer
CN115735110A (zh) * 2020-06-19 2023-03-03 贝克顿·迪金森公司 具有可调节位置的偏移分选偏转板的流式细胞仪及其使用方法
EP4168801A1 (en) 2020-06-22 2023-04-26 Westfälische Wilhelms-Universität Münster Sperm stratification
EP4171819A4 (en) * 2020-06-24 2023-12-06 Becton, Dickinson and Company FLOW CYTOMETRY DROPLET DELIVERY SYSTEMS AND METHODS OF USE THEREOF
CN111915779B (zh) * 2020-07-31 2022-04-15 浙江大华技术股份有限公司 一种闸机控制方法、装置、设备和介质
CN112099216B (zh) * 2020-08-18 2022-06-21 宁波永新光学股份有限公司 一种电动荧光显微镜的调焦方法
CN111948082B (zh) * 2020-08-19 2022-06-17 西南交通大学 一种冷热冲击试验装置
CN114244998B (zh) * 2020-08-27 2024-01-09 南宁富联富桂精密工业有限公司 可动式摄像装置及其控制方法
CN112112627B (zh) * 2020-09-05 2022-11-04 百恒石油装备有限公司 一种数字化条件下的油井生产参数检测方法
JP2023541613A (ja) * 2020-09-10 2023-10-03 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー フローストリーム中の試料を照射するためのレーザ光伝搬システム、及びそれを使用するための方法
CN111832845B (zh) * 2020-09-21 2020-12-11 武汉元光科技有限公司 一种公交线路判定方法、装置、设备和存储介质
CN112088838B (zh) * 2020-09-29 2021-12-24 邢国兵 一种龟鳖孵化系统
CN112400862A (zh) * 2020-11-24 2021-02-26 长沙医学院 一种精原干细胞冷冻保存系统及其保存方法
EP4267938A1 (en) * 2020-12-23 2023-11-01 Engender Technologies Limited Particle classification and sorting systems and methods
CN112485854B (zh) * 2020-12-24 2022-04-22 中国工程物理研究院激光聚变研究中心 一种传输反射镜及其在降低背向散射光对激光驱动器损伤风险中的应用
CN112782045B (zh) * 2021-02-05 2022-04-12 西南石油大学 测定高温高压泡沫液膜渗透能力的装置及其使用方法
CN113109537B (zh) * 2021-03-05 2023-04-28 山东淄博民康药业包装有限公司 一种对注射器针头的自动检测装置
WO2022204600A1 (en) 2021-03-26 2022-09-29 Cytonome/St, Llc Systems and methods for particle sorting with automated adjustment of operational parameters
CN113387475B (zh) * 2021-06-17 2022-06-21 长沙水老官食品有限公司 一种高效抑菌净水装置
CN113417613B (zh) * 2021-06-21 2023-03-24 中国石油大学(华东) 一种可定制波形的水力脉冲发生实验装置及其实验方法
CN113466408A (zh) * 2021-06-23 2021-10-01 新疆生产建设兵团第八师生态环境监测站(石河子市生态环境监测站) 一种移动式大气臭氧监测和处理装置及方法
US20230046207A1 (en) * 2021-08-10 2023-02-16 Becton, Dickinson And Company Outlet fittings for reducing bubbles at the interface with a flow cell, and flow cytometers and methods using the same
CN114062229B (zh) * 2021-09-07 2022-09-23 浙江大学 一种推断颗粒物化学组分的凝结核粒子计数器
CN114113517B (zh) * 2021-10-28 2023-08-29 江苏食品药品职业技术学院 一种河湖水质巡检装置及方法
CN114257800B (zh) * 2021-12-21 2023-08-18 重庆杰夫与友文化创意有限公司 一种智能投影方法、系统及智能投影设备
WO2023235591A1 (en) * 2022-06-03 2023-12-07 The Jackson Laboratory Device to improve sorting stream alignment on cell sorter
CN114878440B (zh) * 2022-07-08 2022-10-28 深圳市帝迈生物技术有限公司 一种样本分析仪及其堵孔检测方法
WO2024020348A2 (en) * 2022-07-18 2024-01-25 Acoustic Bio Inc. Submersion transducer with adjustable focus
TWI828453B (zh) * 2022-11-30 2024-01-01 博訊生物科技股份有限公司 重力分注裝置、具該重力分注裝置的細胞繼代處理機及細胞繼代處理方法
CN115791305B (zh) * 2023-02-03 2023-04-14 山西宝辉环保科技有限公司 一种用于环境检测的水检测装置

Family Cites Families (724)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US34782A (en) * 1862-03-25 Improvement in lamps
US2217342A (en) 1938-05-19 1940-10-08 Aaron G Ladrach Time or speed controlled delayed action relay for strip material classifiers
US3005756A (en) 1958-11-14 1961-10-24 Noland L Van Demark Diluter containing carbon dioxide for preserving semen
US3299354A (en) * 1962-07-05 1967-01-17 Coulter Electronics Aperture tube structure for particle study apparatus
US3499435A (en) * 1967-06-02 1970-03-10 Paul E Rockwell Esophageal probe for use in monitoring
US3547526A (en) 1967-10-26 1970-12-15 Kollsman Instr Corp Optical beam cross-section converter
US3810010A (en) 1968-11-02 1974-05-07 Telefunken Patent Particle analysis method and apparatus wherein liquid containing particles is sucked into a constricted flow path
US3829216A (en) 1968-11-26 1974-08-13 M Persidsky Optical system and method for counting sperm cells
DE1815352C3 (de) 1968-12-18 1975-03-20 Wolfgang Prof. Dr. Dittrich Automatisches MeB- und Zählgerät für die Teilchen einer Dispersion
US3894529A (en) 1969-04-10 1975-07-15 Bio Controls Inc Method and means for controlling the sex of mammalian offspring and product therefor
US4327177A (en) 1969-04-10 1982-04-27 Wallace Shrimpton Method and means for controlling the sex of mammalian offspring and product therefor
US4474875A (en) 1969-04-10 1984-10-02 Wallace Shrimpton Method and means for controlling the sex of mammalian offspring and product therefor
DE1919628C3 (de) 1969-04-18 1975-04-10 Wolfgang Prof. Dr. Dittrich Anordnung zum automatischen Zählen und/oder Klassifizieren von in einem strömungsfähigen Medium dispergierten Teilchen
US3687806A (en) 1969-11-04 1972-08-29 Bio Controls Inc Method for controlling sex of mammalian offspring
US3788744A (en) * 1970-01-14 1974-01-29 Bio Physics Systems Inc Method and apparatus for photoanalysis
US3661460A (en) 1970-08-28 1972-05-09 Technicon Instr Method and apparatus for optical analysis of the contents of a sheathed stream
US3816249A (en) 1970-11-23 1974-06-11 B Bhattacharya Universal medium and method for extending the useful life of semen in vitro
US3644128A (en) * 1970-12-28 1972-02-22 Stuart Lipner Method of preparing comminuted meat products
US3756459A (en) 1971-01-12 1973-09-04 Damon Corp Method and apparatus for metering fluid utilizing pressure differentials
US3916143A (en) 1971-04-22 1975-10-28 Research Corp Branding living animals
US3791384A (en) * 1971-07-15 1974-02-12 Schaumann H Artificial insemination of sows
US3833796A (en) 1971-10-13 1974-09-03 Georgia Tech Res Inst Method and apparatus for chromosome digitizing
BE793185A (fr) * 1971-12-23 1973-04-16 Atomic Energy Commission Appareil pour analyser et trier rapidement des particules telles que des cellules biologiques
US3826364A (en) 1972-05-22 1974-07-30 Univ Leland Stanford Junior Particle sorting method and apparatus
US3761941A (en) 1972-10-13 1973-09-25 Mead Corp Phase control for a drop generating and charging system
CA1029833A (en) 1973-02-23 1978-04-18 Hildegarde Goehde Apparatus for the automatic counting and measuring of suspended particles
US3791517A (en) * 1973-03-05 1974-02-12 Bio Physics Systems Inc Digital fluidic amplifier particle sorter
US4009260A (en) * 1973-04-19 1977-02-22 Schering Aktiengesellschaft Fractionation of sperm
USRE29141E (en) 1973-06-14 1977-02-22 Coulter Electronics, Inc. Apparatus for orienting generally flat particles for sensing
US3893766A (en) 1973-06-14 1975-07-08 Coulter Electronics Apparatus for orienting generally flat particles for slit-scan photometry
US3947093A (en) * 1973-06-28 1976-03-30 Canon Kabushiki Kaisha Optical device for producing a minute light beam
US3944917A (en) * 1973-08-13 1976-03-16 Coulter Electronics, Inc. Electrical sensing circuitry for particle analyzing device
US3909744A (en) 1973-09-24 1975-09-30 United Technologies Corp Unstable resonator system producing a high irradiance beam in the far field
US3854470A (en) 1973-11-23 1974-12-17 L Augspurger Reproduction processes for cellular bodies
US3906929A (en) 1973-11-23 1975-09-23 Lynn Lawrence Augspurger Processes for reproduction of cellular bodies
FR2254639B1 (ja) 1973-12-18 1978-06-02 Agronomique Inst Nat Rech
US4070617A (en) * 1974-05-08 1978-01-24 Max-Planck-Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. Device for controlling the particle flow in an apparatus for measuring the properties of particles suspended in liquid
US3973196A (en) 1974-05-24 1976-08-03 Coulter Electronics, Inc. Method and apparatus for ejecting a metered amount of particulate sample
US3963606A (en) 1974-06-03 1976-06-15 Coulter Electronics, Inc. Semi-automatic adjusting delay for an electronic particle separator
US3877430A (en) 1974-07-17 1975-04-15 Horst K Wieder Artificial insemination apparatus
US4083957A (en) 1974-07-26 1978-04-11 Lang John L Process for the alteration of the sex-ratio of mammals
US4006360A (en) * 1974-08-21 1977-02-01 Block Engineering, Inc. Method of discriminating between dyed particles and background fluorescence of the dye
US4092229A (en) 1975-12-17 1978-05-30 Bhattacharya Bhairab C Thermal convection counter streaming sedimentation and forced convection galvanization method for controlling the sex of mammalian offspring
US3976197A (en) * 1974-11-22 1976-08-24 Bhattacharya Bhairab C Thermal convection counter streaming sedimentation method and apparatus for controlling the sex of mammalian offspring
USRE32350E (en) 1974-11-22 1987-02-10 Bhairab C. Bhattacharya Thermal convection counter streaming sedimentation and forced convection galvanization method for controlling the sex of mammalian offspring
US3940943A (en) 1975-01-22 1976-03-02 The Curators Of The University Of Missouri Multistage freezing system for preservation of biological materials
US4014611A (en) * 1975-04-30 1977-03-29 Coulter Electronics, Inc. Aperture module for use in particle testing apparatus
DE2521236C3 (de) 1975-05-10 1978-12-14 Hildegard Dr. 4400 Muenster Goehde Geb. Kuhl Einrichtung zum Zählen und Messen von in einer Flüssigkeit suspendierten Teilchen
US3960449A (en) 1975-06-05 1976-06-01 The Board Of Trustees Of Leland Stanford Junior University Measurement of angular dependence of scattered light in a flowing stream
US4058732A (en) 1975-06-30 1977-11-15 Analytical Radiation Corporation Method and apparatus for improved analytical fluorescent spectroscopy
US4021117A (en) * 1975-08-07 1977-05-03 Hildegard Gohde Process for automatic counting and measurement of particles
US4007087A (en) * 1975-10-17 1977-02-08 Gametrics Limited Sperm fractionation and storage
US4006380A (en) 1975-10-31 1977-02-01 Shigeru Suga Mounting of carbon electrodes on a holder of an arc lamp
AU2154077A (en) 1976-01-27 1978-07-27 Univ Edinburgh Control of sex ratio in mammalian offspring
US4162282A (en) 1976-04-22 1979-07-24 Coulter Electronics, Inc. Method for producing uniform particles
US4302166A (en) 1976-04-22 1981-11-24 Coulter Electronics, Inc. Droplet forming apparatus for use in producing uniform particles
JPS5319891A (en) 1976-06-10 1978-02-23 Coulter Electronics Method and apparatus for folling drop formation and separation
GB1583150A (en) 1976-08-02 1981-01-21 Milk Marketing Board Apparatus for collecting eggs
US4110604A (en) 1976-11-04 1978-08-29 Becton, Dickinson And Company Particle density measuring system
DE2709399C3 (de) 1977-03-04 1980-07-24 Goehde, Wolfgang, Dr., 4400 Muenster Einrichtung zum Messen von Zelleigenschaften
DE2716095A1 (de) 1977-04-12 1978-10-19 Zoeld Tibor Dr Phys Gasgesteuertes verfahren zum sortieren von in einem elektrolyten suspendierten teilchen und vorrichtung zur durchfuehrung des verfahrens
US4448767A (en) 1977-10-11 1984-05-15 Sumar Corporation Preparation of monospecific male-specific antibody and the use thereof for increasing the percentage of mammalian offspring of either sex
US4191749A (en) * 1977-10-11 1980-03-04 Bryant Bernard J Method and material for increasing the percentage of mammalian offspring of either sex
US4189236A (en) * 1978-03-20 1980-02-19 Coulter Electronics, Inc. Ellipsoid-conic radiation collector and method
US4179218A (en) 1978-05-15 1979-12-18 The Boeing Company Particle size analyzer
US4251733A (en) 1978-06-29 1981-02-17 Hirleman Jr Edwin D Technique for simultaneous particle size and velocity measurement
DE2832091A1 (de) 1978-07-21 1980-01-31 Eidenschink Henning Optisches verfahren zur bestimmung der teilchengroesse kolloidaler loesungen und messgeraet zur durchfuehrung des verfahrens
US4276139A (en) 1978-08-16 1981-06-30 Lawson Rommon L Process for magnetic separation and collection of viable female and male spermatozoa
US4225405A (en) 1978-08-16 1980-09-30 Lawson Rommom L Process for separation and collection of viable female and male spermatozoa
US4230558A (en) 1978-10-02 1980-10-28 Coulter Electronics, Inc. Single drop separator
US4355441A (en) 1978-11-24 1982-10-26 Haell Gunnar B Rope-lock
US4341471A (en) 1979-01-02 1982-07-27 Coulter Electronics, Inc. Apparatus and method for measuring the distribution of radiant energy produced in particle investigating systems
US4316985A (en) 1979-01-16 1982-02-23 Hoffmann-La Roche Inc. Cyclic compounds
US4267268A (en) 1979-03-12 1981-05-12 Nelson Jr Robert A Spermatozoa extenders
US4274408A (en) 1979-03-26 1981-06-23 Beatrice Nimrod Method for guide-wire placement and novel syringe therefor
US4200802A (en) 1979-03-28 1980-04-29 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Parabolic cell analyzer
NO144002C (no) 1979-04-10 1981-05-27 Norsk Hydro S Inst For Kreftfo Anordning for anvendelse ved vaeskestroemsfotometri
US4408877A (en) 1979-04-10 1983-10-11 Ernst Leitz Wetzlar Gmbh Device for hydrodynamic focussing of a particle-suspension in a liquid flow cytophotometer
US4293221A (en) 1979-04-17 1981-10-06 Research Corporation Multidimensional slit-scan flow system
US4255021A (en) * 1979-04-20 1981-03-10 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Optical device with conical input and output prism faces
US4263508A (en) 1979-04-20 1981-04-21 Research Corporation Pulse edge measurement for determining particle dimensional characteristics
US4318482A (en) * 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Method for measuring the velocity of a perturbed jetting fluid in an electrostatic particle sorting system
US4318481A (en) * 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Method for automatically setting the correct phase of the charge pulses in an electrostatic flow sorter
US4325483A (en) 1979-08-20 1982-04-20 Ortho Diagnostics, Inc. Method for detecting and controlling flow rates of the droplet forming stream of an electrostatic particle sorting apparatus
US4318483A (en) 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Automatic relative droplet charging time delay system for an electrostatic particle sorting system using a relatively moveable stream surface sensing system
US4318480A (en) * 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Method and apparatus for positioning the point of droplet formation in the jetting fluid of an electrostatic sorting device
US4317520A (en) * 1979-08-20 1982-03-02 Ortho Diagnostics, Inc. Servo system to control the spatial position of droplet formation of a fluid jet in a cell sorting apparatus
DE2943116C2 (de) 1979-10-25 1986-06-19 Gesellschaft für Strahlen- und Umweltforschung mbH, 8000 München Einrichtung zur durchflußcytometrischen Reaktions- und/oder Diffusionsmessung
US4284355A (en) 1979-10-29 1981-08-18 Ortho Diagnostics, Inc. Automated method for cell volume determination
US4400764A (en) 1980-02-05 1983-08-23 The Boeing Company Low backscatter illumination system
US4367043A (en) * 1980-05-05 1983-01-04 Leland Stanford Junior University Method and means for delivering liquid samples to a sample scanning device
US4362246A (en) 1980-07-14 1982-12-07 Adair Edwin Lloyd Method of treating collected mammal semen and separating sperm into X Y components
US4348107A (en) 1980-07-18 1982-09-07 Coulter Electronics, Inc. Orifice inside optical element
EP0046345A3 (en) 1980-08-15 1982-03-03 Ortho Diagnostic Systems Inc. Controlled hydrodynamic flow in flow cytometry systems
US4350410A (en) 1980-10-08 1982-09-21 The United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Administration Multiprism collimator
US4691829A (en) 1980-11-03 1987-09-08 Coulter Corporation Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point in a droplet generation system
US4487320A (en) 1980-11-03 1984-12-11 Coulter Corporation Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point in a droplet generation system
US4395676A (en) 1980-11-24 1983-07-26 Coulter Electronics, Inc. Focused aperture module
US4361400A (en) 1980-11-26 1982-11-30 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Fluidic assembly for an ultra-high-speed chromosome flow sorter
DE8107889U1 (de) 1981-03-18 1981-10-22 Festo-Maschinenfabrik Gottlieb Stoll, 7300 Esslingen Pneumatische ventilanordnung
US4680258A (en) 1981-03-24 1987-07-14 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Process for sex determination in man by use of monoclonal antibodies to the H-Y antigen
US4818103A (en) 1981-05-15 1989-04-04 Ratcom Flow cytometry
US4673288A (en) 1981-05-15 1987-06-16 Ratcom, Inc. Flow cytometry
EP0068404B1 (en) 1981-06-24 1985-10-02 Becton Dickinson and Company Analyzer for simultaneously determining volume and light emission characteristics of particles
US4339434A (en) 1981-08-17 1982-07-13 Gametrics Limited Method of increasing the incidence of female offspring
US4395397A (en) 1981-09-17 1983-07-26 Sidney Farber Cancer Institute, Inc. Apparatus and method for killing unwanted cells
US4422761A (en) 1981-09-28 1983-12-27 Frommer Joseph C Photo-electric particle sensing system
US4515274A (en) 1981-12-02 1985-05-07 Coulter Corporation Particle analyzing and sorting apparatus
JPS59500340A (ja) 1982-03-08 1984-03-01 モトロ−ラ・インコ−ポレ−テツド 集積回路のリ−ドフレ−ム
US4511661A (en) 1982-03-19 1985-04-16 University Patents, Inc. ATCC HB8116 And its monoclonal anti-H-Y antibody, Hyclonalan
US4498766A (en) * 1982-03-25 1985-02-12 Becton, Dickinson And Company Light beam focal spot elongation in flow cytometry devices
DE3315194A1 (de) 1982-04-29 1983-11-03 International Remote Imaging Systems Inc., 91311 Chatsworth, Calif. Verfahren zum trennen von in einer fluidprobe stroemenden teilchen
DE3315195A1 (de) 1982-04-29 1983-11-03 International Remote Imaging Systems Inc., 91311 Chatsworth, Calif. Verfahren zum ausrichten von teilchen in einer fluidprobe
US4629687A (en) 1982-07-29 1986-12-16 Board Of Trustees Of Michigan State University Positive selection sorting of cells
GB2125181B (en) 1982-08-11 1986-01-29 Coulter Electronics Flow cells for particle study
US4559309A (en) 1982-09-01 1985-12-17 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Flow cytometry-fluorescence measurements for characterizing sperm
EP0120854A4 (en) * 1982-10-05 1985-06-10 Genetic Engineering Inc PROCESS FOR TREATING SPERM RECOVERED FROM A MAMMAL AND SEPARATING THE SPERM INTO COMPONENTS X AND Y.
US4501366A (en) * 1982-12-14 1985-02-26 Adolph Coors Company Photomultiplier tube assembly
DE3372137D1 (en) 1982-12-21 1987-07-23 Crosfield Electronics Ltd Light beam-splitter
US4492436A (en) * 1983-01-03 1985-01-08 At&T Bell Laboratories Polarization independent beam splitter
JPS59143146A (ja) * 1983-02-07 1984-08-16 Nippon Kogaku Kk <Nikon> ミラ−集光型照明光学系
CA1206559A (en) 1983-03-04 1986-06-24 Robert E. Auer Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point of a droplet generation system
IT1197570B (it) 1983-02-11 1988-12-06 Serono Ist Farm Miscele di fsh e lh da ipofisi porcine in rapporto definito
CH651930A5 (en) 1983-03-24 1985-10-15 Coulter Corp Apparatus for analysis and sorting of particles
JPS59174742A (ja) 1983-03-25 1984-10-03 Agency Of Ind Science & Technol 微小粒子を区分又は選別する方法及びその装置
JPS59184841A (ja) 1983-04-05 1984-10-20 ベクトン・デイツキンソン・アンド・カンパニ− サンプル中の白血球のサブクラスを識別する方法および装置
GB2145112B (en) 1983-04-27 1987-02-18 Milk Marketing Board Sorting living spermatozoa
US4523809A (en) 1983-08-04 1985-06-18 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Air Force Method and apparatus for generating a structured light beam array
NZ207393A (en) 1983-08-05 1987-03-31 Neal Lloyd First Staining dna in living cells
US4538733A (en) 1983-10-14 1985-09-03 Becton, Dickinson And Company Particle sorter with neutralized collection wells and method of using same
US4585736A (en) 1983-10-18 1986-04-29 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Flow cytometric measurement of total DNA and incorporated halodeoxyuridine
US4780406A (en) 1983-10-18 1988-10-25 The Regents Of The University Of California Flow cytometric measurement of total DNA and incorporated halodeoxyuridine
US4735504A (en) 1983-10-31 1988-04-05 Technicon Instruments Corporation Method and apparatus for determining the volume & index of refraction of particles
CA1228748A (en) 1983-12-24 1987-11-03 Hans Oetliker Method and apparatus for guiding and collecting light in photometry or the like
US4573796A (en) * 1984-01-06 1986-03-04 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Apparatus for eliminating background interference in fluorescence measurements
US4631483A (en) 1984-02-01 1986-12-23 Coulter Electronics, Inc. Particle analyzing apparatus and method of moving particles in suspension through such apparatus
US4714680B1 (en) 1984-02-06 1995-06-27 Univ Johns Hopkins Human stem cells
US4965204A (en) 1984-02-06 1990-10-23 The Johns Hopkins University Human stem cells and monoclonal antibodies
EP0172242A1 (en) 1984-02-29 1986-02-26 Research Corporation Flow cytometers
US4545677A (en) 1984-03-05 1985-10-08 Becton, Dickinson And Company Prismatic beam expander for light beam shaping in a flow cytometry apparatus
US4600302A (en) 1984-03-26 1986-07-15 Becton, Dickinson And Company Flow cytometry apparatus with uniform incoherent light excitation
DE3412620A1 (de) 1984-04-04 1985-10-17 Basf Ag, 6700 Ludwigshafen Laseroptische anordnung zur messung des dispergiergrades in stroemenden systemen
US4609286A (en) 1984-04-16 1986-09-02 Becton, Dickinson And Company Dispersion prism for separation of wavelengths of spectrally rich light in a flow cytometry apparatus
US4605558A (en) 1984-04-20 1986-08-12 Wallace Shrimpton Process for cell separation
US4660971A (en) 1984-05-03 1987-04-28 Becton, Dickinson And Company Optical features of flow cytometry apparatus
FR2563726B1 (fr) * 1984-05-04 1986-10-10 Robert Cassou Appareil d'insemination artificielle, notamment des carnivores
FR2566543B1 (fr) 1984-06-20 1988-02-26 Commissariat Energie Atomique Dispositif optique a rendement de collection eleve et cytofluorimetre en faisant application
EP0171676B1 (en) 1984-07-31 1990-11-07 Hitachi, Ltd. Free-flow electrophoretic separation method and apparatus therefor
US4661913A (en) 1984-09-11 1987-04-28 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method for the detection and classification of articles using flow cytometry techniques
ATE48477T1 (de) 1984-09-11 1989-12-15 Partec Ag Verfahren und vorrichtung zur sortierung von mikroskopischen partikeln.
US4598408A (en) 1984-10-22 1986-07-01 Trw Inc. High extraction efficiency cylindrical ring resonator
SU1267231A1 (ru) * 1984-11-21 1986-10-30 Ленинградский Институт Ядерной Физики Им.Б.П.Константинова Проточный цитофлуориметр-сортировщик клеток
JPS61139747A (ja) 1984-12-12 1986-06-27 Canon Inc 粒子解析装置
JPS61159135A (ja) 1984-12-31 1986-07-18 Canon Inc 粒子解析装置
US4702598A (en) 1985-02-25 1987-10-27 Research Corporation Flow cytometer
US4683202A (en) 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
US4683195A (en) 1986-01-30 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences
CA1250808A (en) 1985-04-29 1989-03-07 David W. Dresser Semen sexing
US4662742A (en) 1985-05-10 1987-05-05 Becton, Dickinson And Company Scatter/fluorescene beam splitter in a flow cytometry apparatus
JPS61294334A (ja) 1985-06-21 1986-12-25 Canon Inc 粒子解析装置
USRE34782E (en) 1985-07-01 1994-11-08 Diatron Corporation Fluorometer
US4877965A (en) 1985-07-01 1989-10-31 Diatron Corporation Fluorometer
US4744090A (en) 1985-07-08 1988-05-10 Trw Inc. High-extraction efficiency annular resonator
NO156916C (no) 1985-07-10 1987-12-16 Harald B Steen Stroemningskammer for vaeskestroemsfotometer.
NO156917C (no) 1985-07-16 1987-12-16 Harald B Steen Anordning for maaling av biologiske cellers lysspredning i vaeskestroemsfotometere.
US4989977A (en) * 1985-07-29 1991-02-05 Becton, Dickinson And Company Flow cytometry apparatus with improved light beam adjustment
US4794086A (en) 1985-11-25 1988-12-27 Liquid Air Corporation Method for measurement of impurities in liquids
US4770992A (en) 1985-11-27 1988-09-13 Den Engh Gerrit J Van Detection of specific DNA sequences by flow cytometry
US4999283A (en) * 1986-01-10 1991-03-12 University Of Kentucky Research Foundation Method for x and y spermatozoa separation
US5447841A (en) 1986-01-16 1995-09-05 The Regents Of The Univ. Of California Methods for chromosome-specific staining
US5756696A (en) 1986-01-16 1998-05-26 Regents Of The University Of California Compositions for chromosome-specific staining
US4710635A (en) 1986-04-14 1987-12-01 Becton, Dickinson And Company Dual laser excitation from single laser source
NL8601000A (nl) 1986-04-21 1987-11-16 Jan Greve T H Twente Afdeling Het gebruik van gepolariseerd licht in stromingscytometrie.
US5336217A (en) 1986-04-24 1994-08-09 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Insepm) Process for treatment by irradiating an area of a body, and treatment apparatus usable in dermatology for the treatment of cutaneous angio dysplasias
US4790653A (en) 1986-05-22 1988-12-13 Becton Dickinson And Company Housing for a flow cytometry apparatus with particle unclogging feature
JPS62274238A (ja) 1986-05-22 1987-11-28 ベクトン・デイツキンソン・アンド・カンパニ− フロ−サイトメトリ−装置に用いる光学的結合用ゲル
US4786165A (en) 1986-07-10 1988-11-22 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Flow cytometry and apparatus therefor
US4896967A (en) 1986-08-15 1990-01-30 Hamilton-Thorn Research Motility scanner and method
US4896966A (en) 1986-08-15 1990-01-30 Hamilton-Thorn Research Motility scanner and method
US4704891A (en) 1986-08-29 1987-11-10 Becton, Dickinson And Company Method and materials for calibrating flow cytometers and other analysis instruments
US4867908A (en) 1986-08-29 1989-09-19 Becton, Dickinson And Company Method and materials for calibrating flow cytometers and other analysis instruments
FR2609885B1 (fr) 1987-01-22 1989-04-14 Cassou Robert Instrument pour l'insemination artificielle, le transfert d'embryons ou le prelevement de liquides folliculaires chez les mammiferes
US5162306A (en) 1987-01-23 1992-11-10 Donaldson Lloyd E Composition and method for producing superovulation in mammals
US4780451B1 (en) 1987-01-23 1995-04-04 Asua International Inc Composition and method for producing superovulation in cattle
ATE91789T1 (de) 1987-02-17 1993-08-15 Ratcom Inc Durchflusszytometrie.
KR970007077B1 (ko) 1987-03-13 1997-05-02 코울터 일렉트로닉스 인커퍼레이티드 광산란 기술을 이용한 다중-부분식별 분석 방법
US4764013A (en) 1987-03-23 1988-08-16 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Interferometric apparatus and method for detection and characterization of particles using light scattered therefrom
US4765737A (en) 1987-03-30 1988-08-23 Cornell Research Foundation Cell size measurements using light in flow cytometry and cell sorting
US5346990A (en) 1987-04-08 1994-09-13 Cytogam, Inc. Sex-associated membrane proteins and methods for increasing the probability that offspring will be of a desired sex
US4983038A (en) * 1987-04-08 1991-01-08 Hitachi, Ltd. Sheath flow type flow-cell device
US5021244A (en) 1988-12-06 1991-06-04 Cytogam, Inc. Sex-associated membrane antibodies and their use for increasing the probability that offspring will be of a desired sex
JPS63262565A (ja) 1987-04-20 1988-10-28 Hitachi Ltd フロ−セル
EP0289677A3 (en) 1987-04-27 1989-05-10 Fritz K. Preikschat Apparatus and method for particle analysis
ATE110467T1 (de) 1987-04-27 1994-09-15 Preikschat F K Vorrichtung und verfahren zur untersuchung von teilchen.
FR2614626B1 (fr) * 1987-04-30 1989-07-21 Ranoux Claude Conteneur pour fecondation des ovocytes et replacement des embryons chez l'homme et l'animal
KR910002210B1 (ko) 1987-06-25 1991-04-08 데루모가부시끼가이샤 복수내강(內腔)카테테르, 복수내강 카테테르(catheter)조립체 및 이들의 제조방법
JP2642632B2 (ja) 1987-07-03 1997-08-20 株式会社日立製作所 微粒子計測装置および微粒子計測方法
GB8716285D0 (en) 1987-07-10 1987-08-19 Medical Res Council Light collecting device
US4979093A (en) 1987-07-16 1990-12-18 Cavro Scientific Instruments XYZ positioner
US4987539A (en) * 1987-08-05 1991-01-22 Stanford University Apparatus and method for multidimensional characterization of objects in real time
US4796788A (en) * 1987-08-26 1989-01-10 Liqui-Box Corporation Bag-in-box packaging and dispensing of substances which will not readily flow by gravity
US4758729A (en) 1987-08-28 1988-07-19 Spectra-Physics, Inc. Apparatus and method for measuring the included angle of a reflective cone
DE3832901A1 (de) 1987-10-02 1989-04-20 Hitachi Ltd Teilchenmessvorrichtung
US4793705A (en) 1987-10-07 1988-12-27 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Single molecule tracking
US4831385A (en) 1987-10-14 1989-05-16 Burlington Industries, Inc. Vacuum tray fluid-jet start-up system
US4980277A (en) 1987-10-16 1990-12-25 Cultor Ltd. Cryoprotectant solution and method
US5712807A (en) * 1987-10-21 1998-01-27 Bangham; James Andrew Pulse analyzing method and apparatus
US5789155A (en) 1987-10-30 1998-08-04 California Institute Of Technology Process for identifying nucleic acids and triple helices formed thereby
GB8726305D0 (en) 1987-11-10 1987-12-16 Secr Defence Portable particle analysers
EP0316173A1 (en) 1987-11-10 1989-05-17 The Secretary of State for Defence in Her Britannic Majesty's Government of the United Kingdom of Great Britain and Particle monitoring system
GB8726304D0 (en) 1987-11-10 1987-12-16 Secr Defence Particle asymmetry analyser
US4845025A (en) 1987-11-10 1989-07-04 Coulter Corporation Biological sample mixing apparatus and method
US5040890A (en) 1987-11-25 1991-08-20 Becton, Dickinson And Company Sheathed particle flow controlled by differential pressure
US4887721A (en) 1987-11-30 1989-12-19 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Laser particle sorter
US4988619A (en) * 1987-11-30 1991-01-29 United States Department Of Energy Flow cytometry apparatus
US4936465A (en) 1987-12-07 1990-06-26 Zoeld Tibor Method and apparatus for fast, reliable, and environmentally safe dispensing of fluids, gases and individual particles of a suspension through pressure control at well defined parts of a closed flow-through system
US5219729A (en) 1988-02-25 1993-06-15 Serono Laboratories, Inc. Fertility assay
US4986659A (en) 1988-02-29 1991-01-22 Aerometrics, Inc. Method for measuring the size and velocity of spherical particles using the phase and intensity of scattered light
US5622820A (en) 1988-03-10 1997-04-22 City Of Hope Method for amplification and detection of RNA and DNA sequences
US4836038A (en) 1988-03-18 1989-06-06 Aim Instruments Ltd. Automated sampler-injector apparatus and method for sampling a quantity of sample and testing portions of said quantity
US5057413A (en) 1988-06-13 1991-10-15 Becton, Dickinson And Company Method for discriminating between intact and damaged cells in a sample
JPH0213830A (ja) 1988-06-30 1990-01-18 Canon Inc 粒子測定装置
JPH0224535A (ja) 1988-07-12 1990-01-26 Canon Inc 粒子解析装置
US5070080A (en) 1988-08-10 1991-12-03 Fahim Mostafa S Method of inhibiting generation, maturation, motility and viability of sperm with minerals in bioavailable form
US4999513A (en) 1988-09-09 1991-03-12 Canon Kabushiki Kaisha Particle measuring apparatus
JPH0718785B2 (ja) 1988-09-19 1995-03-06 株式会社日立製作所 フローセル装置
JP2635126B2 (ja) 1988-09-30 1997-07-30 東亜医用電子株式会社 核の分葉指数を求めるための粒子分析装置及び方法
JP2635125B2 (ja) 1988-09-30 1997-07-30 東亜医用電子株式会社 核の分葉指数を求めるための粒子分析装置及び方法
US5185107A (en) 1988-10-26 1993-02-09 Iovision, Inc. Fabrication of an intraocular lens
JPH02168160A (ja) 1988-12-22 1990-06-28 Omron Tateisi Electron Co 細胞選別装置
US5976389A (en) 1988-12-30 1999-11-02 Zavos; Panayiotis M. Method of semen filtration
US5726009A (en) * 1989-03-20 1998-03-10 Anticancer, Inc. Native-state method and system for determining viability and proliferative capacity of tissues in vitro
JPH02289808A (ja) 1989-04-28 1990-11-29 Olympus Optical Co Ltd 照明光学系
US4981580A (en) * 1989-05-01 1991-01-01 Coulter Corporation Coincidence arbitration in a flow cytomery sorting system
AU623016B2 (en) 1989-05-10 1992-04-30 United States of America, as represented by the Secretary, U.S. Department of Commerce, The Method to preselect the sex of offspring
US4942305A (en) 1989-05-12 1990-07-17 Pacific Scientific Company Integrating sphere aerosol particle detector
EP0475936B1 (en) * 1989-05-12 1995-09-13 Cytogam, Inc. Sex-associated membrane proteins and methods for increasing the probability that offspring will be of a desired sex
US5055393A (en) 1989-06-13 1991-10-08 Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. Prenatal sex determination of bovine cells using male-specific oligonucleotides
US4954715A (en) 1989-06-26 1990-09-04 Zoeld Tibor Method and apparatus for an optimized multiparameter flow-through particle and cell analyzer
JPH0353164A (ja) * 1989-07-20 1991-03-07 Canon Inc サンプル供給装置及びこれを用いたサンプル測定装置
US5098657A (en) * 1989-08-07 1992-03-24 Tsi Incorporated Apparatus for measuring impurity concentrations in a liquid
US5030002A (en) 1989-08-11 1991-07-09 Becton, Dickinson And Company Method and apparatus for sorting particles with a moving catcher tube
US5005981A (en) 1989-09-08 1991-04-09 Becton, Dickinson And Company Apparatus for method for causing vortices in a test tube
US5215376A (en) 1989-09-08 1993-06-01 Becton, Dickinson And Company Method for causing vortices in a test tube
EP0418026B1 (en) 1989-09-13 1994-11-30 Kabushiki Kaisha Tiyoda Seisakusho Apparatus for pretreating cells for flow cytometry
JP2808321B2 (ja) * 1989-09-19 1998-10-08 東亜医用電子株式会社 細胞分析方法及び装置
US5072382A (en) 1989-10-02 1991-12-10 Kamentsky Louis A Methods and apparatus for measuring multiple optical properties of biological specimens
US5275787A (en) * 1989-10-04 1994-01-04 Canon Kabushiki Kaisha Apparatus for separating or measuring particles to be examined in a sample fluid
DE69025256T2 (de) * 1989-10-11 1996-06-27 Canon Kk Gerät und Verfahren zur Trennung von Teilchen aus flüssigkeitssuspendierten Teilchen in Zusammenhang mit deren Eigenschaften
JPH03140840A (ja) 1989-10-26 1991-06-14 Hitachi Ltd 流動細胞分析装置
FR2653885B1 (fr) 1989-10-27 1994-01-14 Abx Appareil pour le comptage et la determination d'au moins une sous-population leucocytaire.
US5034613A (en) 1989-11-14 1991-07-23 Cornell Research Foundation, Inc. Two-photon laser microscopy
US5101978A (en) 1989-11-27 1992-04-07 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Fluidic sorting device for two or more materials suspended in a fluid
AU647741B2 (en) 1989-12-01 1994-03-31 Regents Of The University Of California, The Methods and compositions for chromosome-specific staining
US5274240A (en) 1990-01-12 1993-12-28 The Regents Of The University Of California Capillary array confocal fluorescence scanner and method
DE69118429T2 (de) * 1990-01-26 1996-09-12 Canon Kk Verfahren zur Messung einer Spezies unter Verwendung von Fluoreszenzlicht
JP3049254B2 (ja) 1990-02-08 2000-06-05 シスメックス株式会社 ２種類の光源を備えた光学式粒子分析装置
IL93634A0 (en) 1990-03-05 1990-12-23 Galai Lab Ltd Particle size analyzer
EP0446509A1 (en) * 1990-03-15 1991-09-18 Panayiotis M. Zavos Semen filter column
US5153117A (en) 1990-03-27 1992-10-06 Genetype A.G. Fetal cell recovery method
US5492534A (en) * 1990-04-02 1996-02-20 Pharmetrix Corporation Controlled release portable pump
US5150313A (en) 1990-04-12 1992-09-22 Regents Of The University Of California Parallel pulse processing and data acquisition for high speed, low error flow cytometry
US5087295A (en) * 1990-06-13 1992-02-11 Becton Dickinson And Company Cleaning cycle for flow cytometers
US5076472A (en) 1990-06-13 1991-12-31 Becton, Dickinson And Company Cleaning cycle for flow cytometers
JPH0710226B2 (ja) 1990-06-20 1995-02-08 株式会社ピーシーシーテクノロジー プロトプラスト攪拌装置並びにそれを含む細胞融合装置及びフローサイトメーター装置
JPH0716392B2 (ja) 1990-06-20 1995-03-01 株式会社ピーシーシーテクノロジー 細胞融合及び融合細胞選別システム
US5160974A (en) 1990-06-25 1992-11-03 Flow Science, Inc. Closed sample cell for use in flow cytometry
JPH04126065A (ja) 1990-06-25 1992-04-27 Saburo Okonogi 食品素材の棒状体成型装置
US5559032A (en) 1990-06-29 1996-09-24 Pomeroy; Patrick C. Method and apparatus for post-transfer assaying of material on solid support
US5366888A (en) 1990-07-09 1994-11-22 Amrad Corporation Limited Enhanced maintenance of pregnancy using leukaemia inhibitory factor in embryo culturing
JP2939647B2 (ja) 1990-07-24 1999-08-25 シスメックス株式会社 フローイメージングサイトメータにおける自動焦点調整方法
IE76732B1 (en) 1990-08-07 1997-11-05 Becton Dickinson Co One step test for absolute counts
US5259593A (en) 1990-08-30 1993-11-09 University Of Southern California Apparatus for droplet stream manufacturing
JPH04115136A (ja) 1990-09-05 1992-04-16 Hitachi Ltd 粒子計測装置
US5132548A (en) 1990-09-14 1992-07-21 High Yield Technology High sensitivity, large detection area particle sensor for vacuum applications
JPH04126080A (ja) 1990-09-14 1992-04-27 Juzo Udaka 耐熱性キシロースイソメラーゼの製造方法
JP2957246B2 (ja) 1990-09-14 1999-10-04 大和化成株式会社 微生物起源カルボキシペプチダーゼｂ様酵素
JPH04126064A (ja) 1990-09-14 1992-04-27 Nitto Shokai:Kk 二重包餡食品の製造法
US5204884A (en) 1991-03-18 1993-04-20 University Of Rochester System for high-speed measurement and sorting of particles
US5108366A (en) 1990-09-28 1992-04-28 Ovamed Corporation Delivery catheter
US5273527A (en) 1992-05-12 1993-12-28 Ovamed Corporation Delivery catheter
US5663048A (en) 1990-10-04 1997-09-02 University Of Calgary Y-chromosome specific polynucleotide probes for prenatal sexing
US5840482A (en) 1990-10-10 1998-11-24 The Regents Of The University Of California Y chromosome specific nucleic acid probe and method for determining the Y chromosome in situ
WO1992008120A1 (en) * 1990-10-29 1992-05-14 Macquarie University Pulsed laser flow cytometry
WO1992008122A1 (en) 1990-10-31 1992-05-14 Biophos Medical Ab Fertility analyzer
US5116125A (en) 1990-10-31 1992-05-26 Biophos Medical Ab Fertility analyzer
JP2874746B2 (ja) 1990-11-22 1999-03-24 シスメックス株式会社 フローイメージングサイトメータにおけるフローセル機構
US5991028A (en) 1991-02-22 1999-11-23 Applied Spectral Imaging Ltd. Spectral bio-imaging methods for cell classification
JP3121849B2 (ja) 1991-02-27 2001-01-09 シスメックス株式会社 フローイメージサイトメータ
JPH0734012B2 (ja) 1991-02-27 1995-04-12 東亜医用電子株式会社 フローイメージサイトメータ
US5144224A (en) 1991-04-01 1992-09-01 Larsen Lawrence E Millimeter wave flow cytometer
US5199576A (en) 1991-04-05 1993-04-06 University Of Rochester System for flexibly sorting particles
EP0515211A3 (en) 1991-05-23 1993-04-07 Becton Dickinson And Company Apparatus and method for phase resolved fluorescence lifetimes of independent and varying amplitude pulses
DE9107792U1 (ja) * 1991-06-25 1991-09-12 Labotect-Labor-Technik, Goettingen, Gmbh, 3406 Bovenden, De
FR2678506B1 (fr) 1991-07-01 2000-03-10 Claude Ranoux Procede de fecondation en cycle spontane.
US6071889A (en) 1991-07-08 2000-06-06 Neurospheres Holdings Ltd. In vivo genetic modification of growth factor-responsive neural precursor cells
US5548661A (en) 1991-07-12 1996-08-20 Price; Jeffrey H. Operator independent image cytometer
US5412466A (en) 1991-07-26 1995-05-02 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Apparatus for forming flattened sample flow for analyzing particles
FR2680101B1 (fr) 1991-08-07 1993-11-05 Robert Cassou Buse d'injection a usage unique pour machine de remplissage de paillettes, notamment pour l'insemination artificielle d'animaux et conservation de produits biologiques.
US5488469A (en) * 1991-08-30 1996-01-30 Omron Corporation Cell analyzing apparatus
EP0529666B1 (en) 1991-08-30 2000-04-12 Omron Corporation Cell analyzing apparatus
US5548395A (en) 1991-09-20 1996-08-20 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Particle analyzer
US5578449A (en) 1991-10-03 1996-11-26 Hilding Ohlsson, S.A. Procedure for the sex determination of embryos in mammals especially applied to bovine embryos
US5919621A (en) 1991-10-24 1999-07-06 Brown; David B. Methods for diagnosing human male infertility
IT1253226B (it) 1991-10-24 1995-07-11 Piero Serra Catetere per l'introduzione o l'aspirazione di liquidi di diversa natura in animali particolarmente per trattamenti ginecologici in bovini, equini e simili
JP3212647B2 (ja) 1991-10-24 2001-09-25 シスメックス株式会社 イメージングフローサイトメータ
US5866344A (en) * 1991-11-15 1999-02-02 Board Of Regents, The University Of Texas System Antibody selection methods using cell surface expressed libraries
GB9125327D0 (en) 1991-11-28 1992-01-29 Nat Res Dev Bovine semen sexing
US5370842A (en) 1991-11-29 1994-12-06 Canon Kabushiki Kaisha Sample measuring device and sample measuring system
JP2593021B2 (ja) 1991-12-13 1997-03-19 伊藤ハム株式会社 ウシ胚の性の識別方法
JP3130628B2 (ja) 1992-01-30 2001-01-31 シスメックス株式会社 粒子判定装置
US5400179A (en) * 1992-02-18 1995-03-21 Asahi Kogaku Kogyo Kabushiki Kaisha Optical multilayer thin film and beam splitter
DE69321748T2 (de) 1992-02-20 1999-06-17 Canon Kk Verfahren und Messapparatur zur Handhabung von Teilchen
GB2278679B (en) 1992-02-21 1995-09-06 Secr Defence Analysis of particle characteristics
US5558998A (en) 1992-02-25 1996-09-24 The Regents Of The Univ. Of California DNA fragment sizing and sorting by laser-induced fluorescence
US6120735A (en) 1992-02-26 2000-09-19 The Ohio States University Fractional cell sorter
US5298967A (en) * 1992-06-02 1994-03-29 Pacific Scientific Company Measurement of concentrations of dissolved solvent
JP3145486B2 (ja) 1992-06-12 2001-03-12 シスメックス株式会社 イメージングフローサイトメータ
GB2284909B (en) 1992-07-13 1996-11-13 Pall Corp Automated system and method for processing biological fluid
JP3215175B2 (ja) 1992-08-10 2001-10-02 シスメックス株式会社 粒子分析装置
US5315122A (en) 1992-08-25 1994-05-24 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method for fluorescent lifetime measurement
PT662124E (pt) 1992-09-03 2002-10-31 Univ California Separacao citometrica de fluxo de alta velocidade de celulas viaveis de mamifero
US5466572A (en) 1992-09-03 1995-11-14 Systemix, Inc. High speed flow cytometric separation of viable cells
US5736410A (en) 1992-09-14 1998-04-07 Sri International Up-converting reporters for biological and other assays using laser excitation techniques
US5275933A (en) 1992-09-25 1994-01-04 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Triple gradient process for recovering nucleated fetal cells from maternal blood
US5311290A (en) * 1992-09-30 1994-05-10 Pulp And Paper Research Institute Of Canada Imaging apparatus and method of fiber analysis
US5371585A (en) 1992-11-10 1994-12-06 Pacific Scientific Company Particle detecting instrument with sapphire detecting cell defining a rectangular flow path
US5359907A (en) 1992-11-12 1994-11-01 Horiba Instruments, Inc. Method and apparatus for dry particle analysis
US5395588A (en) * 1992-12-14 1995-03-07 Becton Dickinson And Company Control of flow cytometer having vacuum fluidics
JPH06197665A (ja) 1993-01-07 1994-07-19 Norin Suisansyo Chikusan Shikenjo 体外受精用培地および体外受精方法
GB2290668B (en) 1993-01-16 1997-07-23 James Andrew Bangham Signal processing system
JP2525713B2 (ja) 1993-01-19 1996-08-21 農林水産省畜産試験場長 低分子チオ―ル化合物を用いた牛胚の培養法および輸送法
US5467189A (en) 1993-01-22 1995-11-14 Venturedyne, Ltd. Improved particle sensor and method for assaying a particle
JP3052665B2 (ja) 1993-01-26 2000-06-19 株式会社日立製作所 フローセル装置
CA2113957A1 (en) 1993-01-29 1994-07-30 University Of Guelph Nucleotide sequences for bovine sex determination
US5453575A (en) 1993-02-01 1995-09-26 Endosonics Corporation Apparatus and method for detecting blood flow in intravascular ultrasonic imaging
EP0682671A4 (en) 1993-02-01 1998-01-14 Seq Ltd METHOD AND DEVICES FOR SEQUENCING DNA.
US5367474A (en) 1993-02-08 1994-11-22 Coulter Corporation Flow cytometer
US5556764A (en) 1993-02-17 1996-09-17 Biometric Imaging, Inc. Method and apparatus for cell counting and cell classification
US5547849A (en) 1993-02-17 1996-08-20 Biometric Imaging, Inc. Apparatus and method for volumetric capillary cytometry
US5563059A (en) 1993-02-23 1996-10-08 Genentech, Inc. Use of human inhibin and human activin to increase the number of mature primate oocytes
EP0648348B1 (en) 1993-03-01 1999-04-28 General Signal Corporation Variable annular illuminator for photolithographic projection imager.
NO930980L (no) 1993-03-18 1994-09-19 Flowtech As Optisk konfigurasjon for væskeströmcytofotometer
US5658751A (en) 1993-04-13 1997-08-19 Molecular Probes, Inc. Substituted unsymmetrical cyanine dyes with selected permeability
JPH06302897A (ja) 1993-04-19 1994-10-28 Sumitomo Electric Ind Ltd レーザ装置、その運転方法およびその応用
US5494795A (en) * 1993-05-05 1996-02-27 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Specific oligonucleotide primers for detection of pathogenic campylobacter bacteria by polymerase chain reaction
US5439578A (en) 1993-06-03 1995-08-08 The Governors Of The University Of Alberta Multiple capillary biochemical analyzer
EP0627643B1 (en) 1993-06-03 1999-05-06 Hamamatsu Photonics K.K. Laser scanning optical system using axicon
BR9405395A (pt) * 1993-06-04 1999-09-08 Kwahak Internacional Co Ltda Dispositivo para inseminação artificial e para transferência de embrião.
NO932088L (no) 1993-06-08 1995-01-05 Oddbjoern Gjelsnes Anordning for anvendelse ved væskeströmscytometri
US5483469A (en) * 1993-08-02 1996-01-09 The Regents Of The University Of California Multiple sort flow cytometer
US5464581A (en) 1993-08-02 1995-11-07 The Regents Of The University Of California Flow cytometer
US6328071B1 (en) 1993-08-06 2001-12-11 Cary Austin Well pressure tank
US5596401A (en) * 1993-09-16 1997-01-21 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Particle analyzing apparatus using a coherence lowering device
JP2826449B2 (ja) * 1993-09-17 1998-11-18 株式会社日立製作所 フロー式粒子画像解析方法およびフロー式粒子画像解析装置
US5503994A (en) 1993-10-08 1996-04-02 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University System for sample detection with compensation for difference in sensitivity to detection of components moving at different velocities
US5480774A (en) * 1993-10-14 1996-01-02 A/F Protein, Inc. Determination of genomic sex in salmonids
JPH07120375A (ja) 1993-10-21 1995-05-12 Hitachi Ltd フロー式粒子画像解析方法及び装置
JP3290786B2 (ja) 1993-11-26 2002-06-10 シスメックス株式会社 粒子分析装置
GB9324938D0 (en) * 1993-12-04 1994-01-26 Atomic Energy Authority Uk Aerosol generator
GB9326253D0 (en) 1993-12-23 1994-02-23 Smithkline Beecham Biolog Vaccines
FI96452C (fi) 1994-01-26 1996-06-25 Pekka Haenninen Menetelmä väriaineiden virittämiseksi
CA2159817C (en) 1994-02-28 2000-09-12 Dae Kee Kim Pyrimidine acyclonucleoside derivatives
AU696154B2 (en) 1994-03-25 1998-09-03 Daiso Co., Ltd. Epimerase
JPH07286953A (ja) 1994-04-19 1995-10-31 Toa Medical Electronics Co Ltd イメージングフローサイトメータ
US5475487A (en) 1994-04-20 1995-12-12 The Regents Of The University Of California Aqueous carrier waveguide in a flow cytometer
US5608518A (en) 1994-04-25 1997-03-04 Wilks, Jr.; Paul A. Multiple internal reflection analyzers not requiring external optics
DE4414940C2 (de) 1994-04-28 1998-07-02 Pekka Haenninen Lumineszenz-Rastermikroskop mit zwei Photonen Anregung
US5595866A (en) 1994-05-27 1997-01-21 Methodist Hospital Of Indiana, Inc. Step-wise method to remove cryoprotectant from sperm
DE4419894A1 (de) * 1994-06-07 1995-12-14 Gip Medizin Technik Gmbh Endoskopische Punktionsnadelvorrichtung
EP0687956B2 (de) 1994-06-17 2005-11-23 Carl Zeiss SMT AG Beleuchtungseinrichtung
US5601234A (en) * 1994-08-01 1997-02-11 Abbott Laboratories Fluid nozzle and method of introducing a fluid
US5891734A (en) 1994-08-01 1999-04-06 Abbott Laboratories Method for performing automated analysis
JP3375203B2 (ja) 1994-08-08 2003-02-10 シスメックス株式会社 細胞分析装置
FR2723735B1 (fr) 1994-08-18 1996-10-31 Abx Sa Boitier a branchement automatique pour distribution de reactifs dans un appareil notamment un analyseur hematologique.
US20020186874A1 (en) 1994-09-07 2002-12-12 Jeffrey H. Price Method and means for image segmentation in fluorescence scanning cytometry
US5790692A (en) 1994-09-07 1998-08-04 Jeffrey H. Price Method and means of least squares designed filters for image segmentation in scanning cytometry
US5540020A (en) 1994-09-26 1996-07-30 Santini; Daniel E. Building panel
US5700692A (en) * 1994-09-27 1997-12-23 Becton Dickinson And Company Flow sorter with video-regulated droplet spacing
US5934885A (en) 1994-10-07 1999-08-10 Bayer Corporation Reagent pump assembly
IL115327A (en) 1994-10-07 2000-08-13 Bayer Ag Diaphragm pump
US5643796A (en) 1994-10-14 1997-07-01 University Of Washington System for sensing droplet formation time delay in a flow cytometer
US5602349A (en) * 1994-10-14 1997-02-11 The University Of Washington Sample introduction system for a flow cytometer
US5602039A (en) * 1994-10-14 1997-02-11 The University Of Washington Flow cytometer jet monitor system
US6861265B1 (en) 1994-10-14 2005-03-01 University Of Washington Flow cytometer droplet formation system
WO1996012171A2 (en) 1994-10-14 1996-04-25 University Of Washington High speed flow cytometer droplet formation system
US5495719A (en) * 1994-11-14 1996-03-05 Gray, Jr.; Carl O. Method of preserving spermatozoa
JP3347495B2 (ja) 1994-11-14 2002-11-20 シスメックス株式会社 粒子分析装置
US5514537A (en) 1994-11-28 1996-05-07 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College Process and apparatus for sorting spermatozoa
WO1996018205A1 (en) 1994-12-08 1996-06-13 Molecular Dynamics, Inc. Fluorescence imaging system employing a macro scanning objective
US5596157A (en) 1994-12-12 1997-01-21 Williams; Maschon Stringed musical instrument with keyboard
US5575914A (en) 1994-12-23 1996-11-19 Vance Products Incorporated Sperm filter trap having compressed glass wool filter material
US5632754A (en) * 1994-12-23 1997-05-27 Devices For Vascular Intervention Universal catheter with interchangeable work element
DE69533469T2 (de) 1994-12-26 2005-09-22 Sysmex Corp. Durchflusszytometer
US5835262A (en) 1994-12-28 1998-11-10 Research Development Corporation Of Japan Multi-wavelength optical microscope
JP3079932B2 (ja) 1994-12-28 2000-08-21 株式会社佐竹製作所 穀粒色彩選別装置
FI98765C (fi) * 1995-01-16 1997-08-11 Erkki Soini Virtaussytometrinen menetelmä ja laite
US5608519A (en) * 1995-03-20 1997-03-04 Gourley; Paul L. Laser apparatus and method for microscopic and spectroscopic analysis and processing of biological cells
US5793485A (en) 1995-03-20 1998-08-11 Sandia Corporation Resonant-cavity apparatus for cytometry or particle analysis
US5598401A (en) 1995-03-21 1997-01-28 Motorola, Inc. Apparatus and method for a digital data communications device to operate in an analog mode
US5620842A (en) 1995-03-29 1997-04-15 Becton Dickinson And Company Determination of the number of fluorescent molecules on calibration beads for flow cytometry
US5786560A (en) 1995-03-31 1998-07-28 Panasonic Technologies, Inc. 3-dimensional micromachining with femtosecond laser pulses
US5699152A (en) 1995-04-03 1997-12-16 Alltrista Corporation Electro-optical inspection system and method
EP0871858B1 (en) 1995-04-06 2006-09-13 DeLaval Holding AB Method and apparatus for quantitative particle determination in fluids
US5682038A (en) 1995-04-06 1997-10-28 Becton Dickinson And Company Fluorescent-particle analyzer with timing alignment for analog pulse subtraction of fluorescent pulses arising from different excitation locations
US5528045A (en) 1995-04-06 1996-06-18 Becton Dickinson And Company Particle analyzer with spatially split wavelength filter
DE19514955C2 (de) 1995-04-24 1997-07-10 Buehler Ag Walzenstuhl für die Vermahlung von Nahrungs- und Futtermittel
US5641457A (en) 1995-04-25 1997-06-24 Systemix Sterile flow cytometer and sorter with mechanical isolation between flow chamber and sterile enclosure
US5687727A (en) 1995-05-01 1997-11-18 Danforth Biomedical Incorporated Catheter adaptor with slitting blade and improved manual control and method of use
EP0957797A4 (en) 1995-05-09 2001-05-16 Univ Missouri SYSTEM FOR INITIATING A FLUID IN THE BOTTOM OF AN ANIMAL
FR2734637B1 (fr) 1995-05-24 1997-08-14 Abx Sa Dispositif d'inspection optique d'un fluide, notamment pour analyses hematologiques
US5798276A (en) 1995-06-07 1998-08-25 Molecular Probes, Inc. Reactive derivatives of sulforhodamine 101 with enhanced hydrolytic stability
US5650847A (en) 1995-06-14 1997-07-22 Erkki Soini Method and device for determination of parameters of individual microparticles
US5716852A (en) 1996-03-29 1998-02-10 University Of Washington Microfabricated diffusion-based chemical sensor
US6454945B1 (en) 1995-06-16 2002-09-24 University Of Washington Microfabricated devices and methods
US5589457A (en) 1995-07-03 1996-12-31 Ausa International, Inc. Process for the synchronization of ovulation
US6411835B1 (en) 1997-01-13 2002-06-25 Medispectra, Inc. Spectral volume microprobe arrays
JPH11511252A (ja) 1995-08-11 1999-09-28 ユニバーシティ・オブ・グエルフ 性特異的および種特異的分子の同定方法、該方法を用いて同定した分子、および該分子の使用
CA2231114A1 (en) 1995-09-06 1997-03-13 The Research Foundation Of State University Of New York Two-photon upconverting dyes and applications
DE19533092A1 (de) 1995-09-07 1997-03-13 Basf Ag Vorrichtung zur parallelisierten Zweiphotonen-Fluoreszenz-Korrelations-Spektroskopie (TPA-FCS) und deren Verwendung zum Wirkstoff-Screening
US6329158B1 (en) 1995-09-15 2001-12-11 Becton Dickinson And Company Use of dimly fluorescing nucleic acid dyes in the identification of nucleated cells
US6040139A (en) 1995-09-19 2000-03-21 Bova; G. Steven Laser cell purification system
US5726751A (en) * 1995-09-27 1998-03-10 University Of Washington Silicon microchannel optical flow cytometer
US5780230A (en) 1995-10-06 1998-07-14 Coriell Institute For Medical Research Compositions and methods for human sperm activation and quantitative assessment of human sperm genome replication
US5736330A (en) 1995-10-11 1998-04-07 Luminex Corporation Method and compositions for flow cytometric determination of DNA sequences
CA2235069C (en) 1995-10-19 2010-12-14 Advanced Reproduction Technologies, Inc. Methods and compositions to improve germ cell and embryo survival and function
US6117068A (en) 1995-10-19 2000-09-12 Elite Genetics, Inc Artificial insemination system
ATE231682T1 (de) 1995-11-09 2003-02-15 Medical Res Council Verwendung von cyb-medium zum transport und lagern von sperma
DE19549015C1 (de) 1995-12-28 1997-04-03 Siemens Ag Verfahren und Anordnung zur Überwachung eines abreißenden Flüssigkeitstrahls
JP3584108B2 (ja) * 1996-01-08 2004-11-04 キヤノン株式会社 レンズ鏡筒
US6641708B1 (en) 1996-01-31 2003-11-04 Board Of Regents, The University Of Texas System Method and apparatus for fractionation using conventional dielectrophoresis and field flow fractionation
WO1997029354A1 (de) 1996-02-05 1997-08-14 Bayer Aktiengesellschaft Verfahren und vorrichtung zum sortieren und zur gewinnung von planar ausgebrachten biologischen objekten wie biologische zellen bzw. zellorganellen, histologischen schnitten, chromosomenteilchen etc. mit laserstrahlen
BR9600722A (pt) 1996-02-14 1997-12-30 Jorge Antonio Rodrigues Claro Bomba de infusão para contidos em bolsas plásticas flexíveis
WO1997030338A1 (en) 1996-02-16 1997-08-21 Inphocyte, Inc. System and method for rapid analysis of cells using spectral cytometry
JP3127111B2 (ja) 1996-02-22 2001-01-22 株式会社日立製作所 フロー式粒子画像解析方法および装置
US6143901A (en) 1996-07-31 2000-11-07 Genesoft, Inc. Complex formation between dsDNA and pyrrole imidazole polyamides
US6090947A (en) 1996-02-26 2000-07-18 California Institute Of Technology Method for the synthesis of pyrrole and imidazole carboxamides on a solid support
US5895922A (en) 1996-03-19 1999-04-20 Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of National Defence Fluorescent biological particle detection system
US5701012A (en) 1996-03-19 1997-12-23 Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of National Defence Fluorescent biological particle detection system
US5747349A (en) 1996-03-20 1998-05-05 University Of Washington Fluorescent reporter beads for fluid analysis
JP3640461B2 (ja) 1996-04-03 2005-04-20 シスメックス株式会社 粒子分析装置
US5707808A (en) * 1996-04-15 1998-01-13 The Regents Of The University Of California Optical selection and collection of DNA fragments
IL126544A (en) 1996-04-25 2004-08-31 Genicon Sciences Inc Test for component detection using detectable particles in diffused light
AU3121297A (en) 1996-05-15 1997-12-05 International Remote Imaging Systems Inc. Selectiely emphasizing particles of interest from a fluid sample for analysis
JP2963393B2 (ja) 1996-06-14 1999-10-18 浜松ホトニクス株式会社 光電子増倍管用電圧分割回路
US5846737A (en) 1996-07-26 1998-12-08 Molecular Probes, Inc. Conjugates of sulforhodamine fluorophores with enhanced fluorescence
US5909278A (en) 1996-07-29 1999-06-01 The Regents Of The University Of California Time-resolved fluorescence decay measurements for flowing particles
US5844685A (en) 1996-07-30 1998-12-01 Bayer Corporation Reference laser beam sampling apparatus
US5719667A (en) * 1996-07-30 1998-02-17 Bayer Corporation Apparatus for filtering a laser beam in an analytical instrument
US6074827A (en) 1996-07-30 2000-06-13 Aclara Biosciences, Inc. Microfluidic method for nucleic acid purification and processing
US5883378A (en) 1996-07-30 1999-03-16 Bayer Corporation Apparatus and methods for transmitting electrical signals indicative of optical interactions between a light beam and a flowing suspension of particles
US6042249A (en) 1996-07-30 2000-03-28 Bayer Corporation Illuminator optical assembly for an analytical instrument and methods of alignment and manufacture
EP0822401A3 (en) 1996-07-30 1999-05-06 Bayer Corporation Hydraulic system for a hematology analytical instrument
ES2328423T3 (es) 1996-07-30 2009-11-12 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Sistema optico para un instrumento de hematologia analitica.
US5745308A (en) 1996-07-30 1998-04-28 Bayer Corporation Methods and apparatus for an optical illuminator assembly and its alignment
US5872627A (en) * 1996-07-30 1999-02-16 Bayer Corporation Method and apparatus for detecting scattered light in an analytical instrument
US5998140A (en) 1996-07-31 1999-12-07 The Scripps Research Institute Complex formation between dsDNA and oligomer of cyclic heterocycles
US5804436A (en) 1996-08-02 1998-09-08 Axiom Biotechnologies, Inc. Apparatus and method for real-time measurement of cellular response
CA2261148A1 (en) 1996-08-07 1998-02-12 Robert Slovak Additive dispensing apparatus
EP0925494B1 (en) 1996-09-04 2001-12-19 Scandinavian Micro Biodevices A/S A micro flow system for particle separation and analysis
US5873254A (en) * 1996-09-06 1999-02-23 Interface Multigrad Technology Device and methods for multigradient directional cooling and warming of biological samples
DE69729307D1 (de) 1996-09-06 2004-07-01 Medarex Inc Cyanidinzusammensetzungen und deren therapeutische und diagnostische verwendungen
US6221654B1 (en) 1996-09-25 2001-04-24 California Institute Of Technology Method and apparatus for analysis and sorting of polynucleotides based on size
US5759767A (en) 1996-10-11 1998-06-02 Joseph R. Lakowicz Two-photon and multi-photon measurement of analytes in animal and human tissues and fluids
US6002471A (en) 1996-11-04 1999-12-14 California Institute Of Technology High resolution scanning raman microscope
US5799830A (en) 1996-11-08 1998-09-01 Carroll; David C. Pressure vessel access port
US5696157A (en) 1996-11-15 1997-12-09 Molecular Probes, Inc. Sulfonated derivatives of 7-aminocoumarin
CA2279574C (en) * 1997-01-31 2007-07-24 The Horticulture & Food Research Institute Of New Zealand Ltd. Optical apparatus
AU6141598A (en) 1997-02-04 1998-08-25 Hybridon, Inc. Base protecting groups and process for oligonucleotide synthesis
US5874266A (en) * 1997-03-27 1999-02-23 Palsson; Bernhard O. Targeted system for removing tumor cells from cell populations
US6753161B2 (en) 1997-03-27 2004-06-22 Oncosis Llc Optoinjection methods
US6534308B1 (en) 1997-03-27 2003-03-18 Oncosis, Llc Method and apparatus for selectively targeting specific cells within a mixed cell population
GB9707096D0 (en) 1997-04-08 1997-05-28 Smithkline Beecham Plc Novel device
JP2968231B2 (ja) 1997-04-11 1999-10-25 株式会社荏原製作所 空調システム
US6133995A (en) 1997-05-09 2000-10-17 Sysmex Corporation Particle measuring apparatus
US6050935A (en) 1997-05-09 2000-04-18 Biofertec Container assembly for intravaginal fertilization and culture and embryo transfer and method of intravaginal fertilization and culture employing such a container
JP4754661B2 (ja) 1997-06-09 2011-08-24 ミリポア・コーポレイション 流体サンプル中のミクロ粒子を検出するための方法及び装置
AU8148898A (en) 1997-06-23 1999-01-04 Luminex Corporation Interlaced lasers for multiple fluorescence measurement
ATE326228T1 (de) 1997-07-01 2006-06-15 Vicam Lp Verfahren zur geschlechtsbestimmung von säuger- nachkommenschaft
US6111398A (en) 1997-07-03 2000-08-29 Coulter International Corp. Method and apparatus for sensing and characterizing particles
BR9704313A (pt) 1997-07-08 1999-04-06 Alves Elias Walter Utilização de ig-y de ovo de galinha associado a anticorpos monoclonais contra antigenos sexo especifico na imunosexagem de espermatozóides de bovinos
US5899848A (en) 1997-07-14 1999-05-04 Haubrich; Mark A. Device and process for artificial insemination of animals
US5876942A (en) 1997-07-24 1999-03-02 National Science Council Of Republic Of China Process for sexing cow embryos
US5985216A (en) 1997-07-24 1999-11-16 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Agriculture Flow cytometry nozzle for high efficiency cell sorting
US5985538A (en) 1997-08-01 1999-11-16 Saint Barnabas Medical Center Cryopreservation and cell culture medium comprising less than 50 mM sodium ions and greater than 100 mM choline salt
US5819948A (en) 1997-08-21 1998-10-13 Van Den Engh; Gerrit J. Particle separating apparatus and method
US6003678A (en) 1997-08-21 1999-12-21 University Of Washington Particle separating apparatus and method
US5880474A (en) 1997-08-29 1999-03-09 Becton Dickinson And Company Multi-illumination-source flow particle analyzer with inter-location emissions crosstalk cancelation
WO1999015010A1 (en) 1997-09-22 1999-04-01 University Of Guelph Reduction of sperm sensitivity to chilling
US6540895B1 (en) 1997-09-23 2003-04-01 California Institute Of Technology Microfabricated cell sorter for chemical and biological materials
US5965321A (en) 1997-09-25 1999-10-12 E. U. Du Pont De Nemours And Company Peel-apart photosensitive elements and their process of use
JP3735190B2 (ja) 1997-10-28 2006-01-18 オリンパス株式会社 走査型サイトメータ
US6322901B1 (en) 1997-11-13 2001-11-27 Massachusetts Institute Of Technology Highly luminescent color-selective nano-crystalline materials
AU754775B2 (en) 1997-11-19 2002-11-21 University Of Washington High throughput optical scanner
US6086574A (en) 1997-11-21 2000-07-11 Hyclone Laboratories, Inc. Fluid delivery systems with diptube connector
US5895764A (en) 1997-11-24 1999-04-20 University Of New Mexico Controlled sheath flow injection cytometry
US6207392B1 (en) 1997-11-25 2001-03-27 The Regents Of The University Of California Semiconductor nanocrystal probes for biological applications and process for making and using such probes
US5990479A (en) 1997-11-25 1999-11-23 Regents Of The University Of California Organo Luminescent semiconductor nanocrystal probes for biological applications and process for making and using such probes
US5986216A (en) 1997-12-05 1999-11-16 Hubbell Incorporated Reinforced insulator
EP1040340A4 (en) 1997-12-12 2008-01-09 Chemunex S A CYTOMETER IN DIGITAL STREAM
US6071689A (en) * 1997-12-31 2000-06-06 Xy, Inc. System for improving yield of sexed embryos in mammals
US6149867A (en) * 1997-12-31 2000-11-21 Xy, Inc. Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm
WO1999038883A1 (en) 1998-02-03 1999-08-05 Xy, Inc. Specific oligonucleotide primers for detection of bovine male chromosome presence by polymerase chain reaction and method
SE9800360D0 (sv) 1998-02-06 1998-02-06 Goeteborg University Science I Method, apparatus and flow cell for high sensitivity detection of fluorescent molecules
US6746873B1 (en) 1998-02-20 2004-06-08 Xy, Inc. Vibratory system for a sorting flow cytometer
CA2321075C (en) 1998-02-20 2009-10-06 Cytomation, Inc. A vibratory system for a sorting flow cytometer
US6154276A (en) 1998-02-23 2000-11-28 The Regents Of The University Of California Waveguide detection of right-angle-scattered light in flow cytometry
US6281018B1 (en) 1998-02-26 2001-08-28 Coulter International Corp. Selective purification and enrichment sorting of flow cytometer droplets based upon analysis of droplet precursor regions
US6211477B1 (en) 1998-02-26 2001-04-03 Becton Dickinson And Company Electrostatic deceleration system for flow cytometer
US6248590B1 (en) 1998-02-27 2001-06-19 Cytomation, Inc. Method and apparatus for flow cytometry
US6723290B1 (en) * 1998-03-07 2004-04-20 Levine Robert A Container for holding biologic fluid for analysis
US6042025A (en) * 1998-03-13 2000-03-28 Smith Et Al. Two hole dispenser with baffles
US6371331B1 (en) 1998-03-16 2002-04-16 Partec Partikelzahlgerate Gmbh Electronic apparatus for dispensing precise small quantities of fluid
JP3594794B2 (ja) 1998-03-24 2004-12-02 独立行政法人 科学技術振興機構 ナノ秒時間ゲート分光診断装置
US6642018B1 (en) 1998-03-27 2003-11-04 Oncosis Llc Method for inducing a response in one or more targeted cells
EP1068509A4 (en) 1998-03-30 2005-05-25 Bioshaf FLOW CYTOMETER FOR THE ANALYSIS OF GENERAL DIAGNOSTIC FACTORS IN CELLS AND BIOLOGICAL FLUIDS
US6175409B1 (en) * 1999-04-02 2001-01-16 Symyx Technologies, Inc. Flow-injection analysis and variable-flow light-scattering methods and apparatus for characterizing polymers
JP3350442B2 (ja) 1998-04-09 2002-11-25 科学技術振興事業団 顕微鏡システム
WO1999057955A1 (en) 1998-05-14 1999-11-18 Luminex Corporation Zero dead time architecture and method for flow cytometer
CA2640578A1 (en) * 1998-05-14 1999-11-18 Luminex Corporation Multi-analyte diagnostic system and computer implemented process for same
EP1046032A4 (en) 1998-05-18 2002-05-29 Univ Washington LIQUID ANALYSIS CARTRIDGE
CA2333201A1 (en) 1998-05-22 1999-12-02 California Institute Of Technology Microfabricated cell sorter
US6079836A (en) 1998-07-20 2000-06-27 Coulter International Corp. Flow cytometer droplet break-off location adjustment mechanism
ES2296398T3 (es) * 1998-07-30 2008-04-16 Xy, Inc. Sistema de inseminacion equina artificial no quirurgica.
US6729369B2 (en) 1998-07-31 2004-05-04 Chata Biosystems, Inc. Vessel for containing/transporting a fluent substance
US20040107150A1 (en) 1998-07-31 2004-06-03 Chata Biosystems, Inc. Of Colorado Apparatus and method with vessel for containing/transporting a fluent substance
DE29813921U1 (de) 1998-08-04 1998-10-08 Kisfeld Alfons Vorrichtung zur Besamung von Tieren, insbesondere Sauen
US6309815B1 (en) 1998-08-07 2001-10-30 University Of Kansas Medical Center Composition and method for preparation, storage and activation of large populations of immotile sperm
GB9817795D0 (en) 1998-08-14 1998-10-14 Genosis Inc A method and device for separation and detection of spermatozoa in a sample
WO2000009113A1 (en) 1998-08-17 2000-02-24 Trout William E Use of zeranol to modulate reproductive cycles
ATE376175T1 (de) 1998-08-21 2007-11-15 Union Biometrica Inc Instrument zur analyse und selektiven verteilung von objektproben
US6326144B1 (en) 1998-09-18 2001-12-04 Massachusetts Institute Of Technology Biological applications of quantum dots
US6495333B1 (en) 1998-09-22 2002-12-17 Becton Dickinson And Company Flow cytometric, whole blood dendritic cell immune function assay
US6042052A (en) 1998-09-25 2000-03-28 Smith; Donald E. Retractable step fairing for amphibian airplane
US6208411B1 (en) 1998-09-28 2001-03-27 Kla-Tencor Corporation Massively parallel inspection and imaging system
US6707555B1 (en) 1998-10-15 2004-03-16 Sysmex Corporation Optical information measuring apparatus
US6423505B1 (en) 1998-12-03 2002-07-23 Becton Dickinson And Company Methods and reagents for quantitation of HLA-DR and CD11b expression on peripheral blood cells
US7649153B2 (en) * 1998-12-11 2010-01-19 International Business Machines Corporation Method for minimizing sample damage during the ablation of material using a focused ultrashort pulsed laser beam
US7116407B2 (en) 1998-12-15 2006-10-03 Union Biometrica, Inc. System for axial pattern analysis of multicellular organisms
AU2365100A (en) 1998-12-15 2000-07-03 Union Biometrica, Inc. Axial pattern analysis and sorting instrument for multicellular organisms employing improved light scatter trigger
US6128133A (en) 1998-12-22 2000-10-03 Lucent Technologies Inc. Optical beamsplitter
JP2000206032A (ja) 1999-01-06 2000-07-28 Bayer Corp 可変割合体積粒子計数装置及び試料の特性を定める方法
US20010006416A1 (en) 1999-01-11 2001-07-05 Johnson Paul E. Ribbon flow cytometry apparatus and methods
US6256096B1 (en) 1999-01-11 2001-07-03 Softray Flow cytometry apparatus and method
US6150119A (en) * 1999-01-19 2000-11-21 Caliper Technologies Corp. Optimized high-throughput analytical system
US6671044B2 (en) 1999-01-25 2003-12-30 Amnis Corporation Imaging and analyzing parameters of small moving objects such as cells in broad flat flow
US6580504B1 (en) 1999-01-25 2003-06-17 Amnis Corporation Multipass cavity for illumination and excitation of moving objects
US6473176B2 (en) 1999-01-25 2002-10-29 Amnis Corporation Imaging and analyzing parameters of small moving objects such as cells
US6707551B2 (en) * 2000-01-24 2004-03-16 Amnis Corporation Multipass cavity for illumination and excitation of moving objects
EP1025904B1 (en) 1999-02-02 2007-05-09 Nipro Corporation Tube for sperm washing and concentration and method for sperm washing and concentration
US6119465A (en) 1999-02-10 2000-09-19 Mullens; Patrick L. Shipping container for storing materials at cryogenic temperatures
FR2789778B1 (fr) 1999-02-12 2001-09-14 France Telecom Procede pour associer des references d'acheminement a des paquets de donnees au moyen d'une memoire trie, et routeur de paquets appliquant ce procede
US6323632B1 (en) 1999-08-13 2001-11-27 Coulter International Corp. Solid state RF oscillator-detector for flow cytometer
JP2002537557A (ja) 1999-02-19 2002-11-05 アイデックス ラボラトリーズ インコーポレイテッド 高開口数流れ血球計算器及びその使用方法
ES2568624T3 (es) 1999-03-05 2016-05-03 Viking Genetics F.M.B.A. Determinación de la concentración y de la viabilidad del esperma para inseminación artificial
US6097485A (en) * 1999-03-08 2000-08-01 Integrated Waveguides, Inc. Microchip optical transport technology for use in a personal flow cytometer
US6114857A (en) 1999-03-08 2000-09-05 Baker Hughes Incorporated System and method for monitoring corrosion in oilfield wells and pipelines utilizing time-domain-reflectometry
EP1169122A2 (en) 1999-03-24 2002-01-09 Torsana Biosensor A/S Spatially directed interaction on a solid surface
FR2791645B1 (fr) 1999-04-02 2001-06-15 Valois Sa Echantillon de produit fluide destine a la presse
US6193647B1 (en) * 1999-04-08 2001-02-27 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Microfluidic embryo and/or oocyte handling device and method
US6793387B1 (en) 1999-05-08 2004-09-21 Chata Biosystems, Inc. Apparatus for automatic preparation of a mixture and method
FR2793495B1 (fr) 1999-05-14 2001-08-10 Imv Technologies Dilueur pour la cryoconservation de spermatozoides de bovins
WO2000070080A1 (en) 1999-05-17 2000-11-23 Caliper Technologies Corp. Focusing of microparticles in microfluidic systems
FR2793708B1 (fr) 1999-05-21 2001-08-03 Valois Sa Dispositif de distribution de produit fluide
US6372506B1 (en) 1999-07-02 2002-04-16 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method for verifying drop delay in a flow cytometer
IT1307787B1 (it) 1999-07-26 2001-11-19 Univ Firenze Processo per incrementare la motilita' degli spermatozoi e spermatozoia motilita' superiore cosi' ottenuti.
DE19935766A1 (de) 1999-07-29 2001-02-01 Friedrich Schiller Uni Jena Bu Verfahren zur optischen Anregung von Fluorophor-markierter DNA und RNA
US6664550B2 (en) 1999-08-30 2003-12-16 Sandia National Laboratories Apparatus to collect, classify, concentrate, and characterize gas-borne particles
US6495366B1 (en) 1999-09-03 2002-12-17 Therakos, Inc. Uninterrupted flow pump apparatus and method
US6813017B1 (en) 1999-10-20 2004-11-02 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method employing incoherent light emitting semiconductor devices as particle detection light sources in a flow cytometer
WO2001029538A1 (en) * 1999-10-20 2001-04-26 Becton Dickinson And Company An apparatus and method employing incoherent light emitting semiconductor devices as particle detection light sources in a flow cytometer
US7024316B1 (en) * 1999-10-21 2006-04-04 Dakocytomation Colorado, Inc. Transiently dynamic flow cytometer analysis system
WO2001028700A1 (en) * 1999-10-21 2001-04-26 Cytomation, Inc. Transiently dynamic flow cytometer analysis system
US6472153B1 (en) 1999-10-26 2002-10-29 Epoch Biosciences, Inc. Hybridization-triggered fluorescent detection of nucleic acids
US7208265B1 (en) 1999-11-24 2007-04-24 Xy, Inc. Method of cryopreserving selected sperm cells
JP5087192B2 (ja) * 1999-11-30 2012-11-28 インテレクソン コーポレイション 細胞群内の特定細胞に選択的に照準付けする方法及び装置
US6263745B1 (en) * 1999-12-03 2001-07-24 Xy, Inc. Flow cytometer nozzle and flow cytometer sample handling methods
US6558911B1 (en) 1999-12-10 2003-05-06 Oregon Health Sciences University Sperm quality assay
US6726619B2 (en) 2000-01-03 2004-04-27 Iberica De Reproduccion Asistida, S.L. Artificial insemination device for pigs
US6465169B2 (en) 2000-01-14 2002-10-15 Artemis Pharmaceuticals Gmbh Method for cryoconservation of Zebrafish sperm
PT1118268E (pt) 2000-01-14 2002-09-30 Exelixis Deutschland Gmbh Metodo para a criopreservacao de esperma de peixe-zebra
IT1317724B1 (it) 2000-01-14 2003-07-15 Istituto Sperimentale Italiano Procedimento per la produzione di embrioni non umani di sessopredeterminato ad alto valore genetico.
EP1257664A4 (en) 2000-01-28 2006-04-05 Althea Technologies Inc METHOD FOR THE ANALYSIS OF GENE EXPRESSION
US6587203B2 (en) 2000-02-17 2003-07-01 Cornell Research Foundation, Inc. Sort stream stabilizer for flow cytometer
US6618143B2 (en) 2000-02-18 2003-09-09 Idexx Laboratories, Inc. High numerical aperture flow cytometer and method of using same
US6646742B1 (en) 2000-02-19 2003-11-11 Mwi, Inc. Optical device and method for multi-angle laser light scatter
JP3587755B2 (ja) 2000-03-14 2004-11-10 シスメックス株式会社 粒子測定装置およびその方法
GB2360360B (en) 2000-03-14 2002-03-20 Univ Bristol A method of sorting cells
US6482652B2 (en) 2000-03-23 2002-11-19 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Biological particle sorter
CZ20023261A3 (cs) 2000-03-30 2003-02-12 Iowa State University Research Foundation Genetické markery pro zlepšené vlastnosti zvířecího masa
AU2001249820A1 (en) 2000-04-04 2001-10-15 California Institute Of Technology Methods and systems for molecular fingerprinting
US6970246B2 (en) 2000-04-11 2005-11-29 Chemometec A/S Method and apparatus for detecting fluorescence of a sample
EP1147774A1 (en) 2000-04-20 2001-10-24 Stichting Dienst Landbouwkundig Onderzoek Method for improving the quality of sperm for artificial insemination of animals
CA2751660C (en) * 2000-05-09 2013-08-20 Xy, Llc A particle differentiation apparatus for spermatozoa
EP2258169B1 (en) * 2000-05-09 2019-07-10 Xy, Llc Method for isolating X-chromosome bearing and Y-chromosome bearing populations of spermatozoa
AU2001274864A1 (en) 2000-05-19 2001-12-03 Cytomation, Inc. A rapid multi-material sample input system
US6700130B2 (en) * 2001-06-29 2004-03-02 Honeywell International Inc. Optical detection system for flow cytometry
US6784981B1 (en) 2000-06-02 2004-08-31 Idexx Laboratories, Inc. Flow cytometry-based hematology system
US6590911B1 (en) 2000-06-02 2003-07-08 Coherent, Inc. Passively modelocked harmonic-generating laser
US7351376B1 (en) 2000-06-05 2008-04-01 California Institute Of Technology Integrated active flux microfluidic devices and methods
US6503698B1 (en) * 2000-06-16 2003-01-07 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Cryopreservation of swine embryos
WO2001094908A2 (en) 2000-06-07 2001-12-13 Lockheed Martin Naval Electronics And Surveillance Systems System and method to detect the presence of a target organism within an air sample using flow cytometry
EP1294293A4 (en) 2000-06-12 2009-11-04 Xy Inc INTEGRATED FLUID MANAGEMENT SYSTEM USING ISOLATED POPULATIONS OF X- AND Y-CHROMOSOME-CARRYING SPERMATOZOES
DE10031028B4 (de) 2000-06-26 2008-09-04 Gnothis Holding Sa Verfahren zur Selektion von Partikeln
GB0016920D0 (en) 2000-07-10 2000-08-30 Univ Cambridge Tech Decondensation of DNA
US7193706B2 (en) 2000-08-02 2007-03-20 Arizona Board Of Regents, Acting On Behalf Of Arizona State University Computer interfaced scanning fluorescence lifetime microscope applied to directed evolution
US20040005582A1 (en) * 2000-08-10 2004-01-08 Nanobiodynamics, Incorporated Biospecific desorption microflow systems and methods for studying biospecific interactions and their modulators
DE10196494T1 (de) 2000-08-10 2003-11-20 Osram Sylvania Inc Displayeinrichtung mit reduzierter Farbverschiebung während der Lebensdauer
CN1450857A (zh) 2000-08-10 2003-10-22 Gtc生物治疗学公司 精子的低温保存
FR2813283B1 (fr) 2000-08-25 2003-02-14 Valois Sa Distributeur a pompe integree
FR2813182A1 (fr) * 2000-08-29 2002-03-01 Saadollah Moazzezi Methode pour concentrer des spermatozoides mobiles dans un liquide, et dispositif de mise en oeuvre
EP1190684A1 (en) 2000-09-05 2002-03-27 Universiteit Gent Device and method for artificial insemination of bovines and other animals
US20020028434A1 (en) 2000-09-06 2002-03-07 Guava Technologies, Inc. Particle or cell analyzer and method
AU2001288980B2 (en) 2000-09-08 2005-12-01 Pig Improvement Company Uk Limited Novel PRKAG3 alleles and use of the same as genetic markers for reproductive and meat quality traits
WO2002023163A1 (en) 2000-09-15 2002-03-21 California Institute Of Technology Microfabricated crossflow devices and methods
GB0023041D0 (en) 2000-09-20 2000-11-01 Univ Manchester Identification apparatus
WO2002026114A2 (en) 2000-09-27 2002-04-04 Bitensky Mark W Cellular diagnostic arrays, methods of using and processes for producing same
CN1325909C (zh) 2000-09-27 2007-07-11 清华大学 用于微粒操纵与微粒导向的装置及其使用方法
BR0005045A (pt) 2000-09-28 2002-05-14 Marcos Fernando De Resende Mat Método para sexagem de espermatozóides usando a via clássica do sistema complemento, com eliminação da via alternativa pela inativação da proteina "b"
AU2002211389A1 (en) 2000-10-03 2002-04-15 California Institute Of Technology Microfluidic devices and methods of use
US20040031071A1 (en) * 2000-10-05 2004-02-12 Xy, Inc. System of hysteroscopic insemination of mares
JP2004510423A (ja) 2000-10-05 2004-04-08 エックスワイ，インコーポレイテッド 雌の子宮鏡授精システム
WO2002031467A1 (en) 2000-10-12 2002-04-18 Amnis Corporation Multipass cavity for illumination and excitation of moving objects
JP2004537712A (ja) 2000-10-18 2004-12-16 バーチャル・アレイズ・インコーポレーテッド 多重細胞分析システム
AU2002239480B2 (en) 2000-10-23 2005-06-02 Medical Instill Technologies, Inc. Fluid dispenser with bladder inside rigid vial
US20040034879A1 (en) * 2000-11-09 2004-02-19 Steve Rothstein Mammalian sex selection using genetic modification
US6667459B1 (en) 2000-11-21 2003-12-23 Hypertherm, Inc. Configurable nozzle baffle apparatus and method
SE0004777D0 (sv) * 2000-12-22 2000-12-22 Amersham Pharm Biotech Ab Separation of X-and Y-sperm cells
US20050064383A1 (en) 2000-11-22 2005-03-24 Bashkin James K. Methods and apparatus for producing gender enriched sperm
CA2468772C (en) 2000-11-29 2013-10-29 George E. Seidel System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations
US20020064809A1 (en) 2000-11-29 2002-05-30 Mutz Mitchell W. Focused acoustic ejection cell sorting system and method
US20020064808A1 (en) 2000-11-29 2002-05-30 Mutz Mitchell W. Focused acoustic energy for ejecting cells from a fluid
US6849423B2 (en) * 2000-11-29 2005-02-01 Picoliter Inc Focused acoustics for detection and sorting of fluid volumes
US7713687B2 (en) 2000-11-29 2010-05-11 Xy, Inc. System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations
CA2430336A1 (en) 2000-11-30 2002-06-06 The Netherlands Cancer Institute Membrane molecule indicator compositions and methods
US6576291B2 (en) 2000-12-08 2003-06-10 Massachusetts Institute Of Technology Preparation of nanocrystallites
WO2002057775A1 (en) 2000-12-15 2002-07-25 Cytomation, Inc. Electrical conductive containment system
US6577387B2 (en) 2000-12-29 2003-06-10 Johnson & Johnson Vision Care, Inc. Inspection of ophthalmic lenses using absorption
CA2436958A1 (fr) 2001-01-29 2002-08-08 Universite De Geneve Derives d'acyclonucleosides pyrimidiniques, leur procede de preparation et leur utilisation
US6673095B2 (en) * 2001-02-12 2004-01-06 Wound Healing Of Oklahoma, Inc. Apparatus and method for delivery of laser light
US7029916B2 (en) 2001-02-21 2006-04-18 Maxcyte, Inc. Apparatus and method for flow electroporation of biological samples
US6760587B2 (en) 2001-02-23 2004-07-06 Qualcomm Incorporated Forward-link scheduling in a wireless communication system during soft and softer handoff
WO2002077011A2 (en) 2001-03-12 2002-10-03 The State Of Oregon Acting By And Through The State Board Of Higher Education On Behalf Of The University Of Oregon Oxidation-reduction sensitive green fluorescent protein variants
US6797139B2 (en) * 2001-03-19 2004-09-28 Applera Corporation Detection cell for guiding excitation light therein and method for using same
US6706163B2 (en) 2001-03-21 2004-03-16 Michael Seul On-chip analysis of particles and fractionation of particle mixtures using light-controlled electrokinetic assembly of particles near surfaces
US20050081256A1 (en) 2001-03-22 2005-04-14 Forsberg Erik J. Sex- specific selection of sperm from transgenic animals
EP1565747B1 (en) 2001-03-29 2013-11-27 Cellect Technologies Corp. Method and system for separating and sorting particles
EP1245944B1 (en) 2001-03-29 2007-02-14 Sysmex Corporation Flow cytometer
DE60227649D1 (de) * 2001-04-03 2008-08-28 Micronics Inc Getrennt fokussierendes zytometer
JP2002311027A (ja) 2001-04-09 2002-10-23 Hitachi Software Eng Co Ltd ビーズ、ビーズ製造方法、フローサイトメータ及びプログラム
US7043500B2 (en) * 2001-04-25 2006-05-09 Board Of Regents, The University Of Texas Syxtem Subtractive clustering for use in analysis of data
US6416190B1 (en) 2001-04-27 2002-07-09 University Of Chicago Apparatus for using optical tweezers to manipulate materials
US20020186375A1 (en) 2001-05-01 2002-12-12 Asbury Charles L. Device and methods for detecting samples in a flow cytometer independent of variations in fluorescence polarization
WO2002092161A1 (en) 2001-05-10 2002-11-21 Biophan, Llc Miniaturized particle analyzer
EP1385622B1 (en) 2001-05-10 2014-07-09 Albemarle Netherlands B.V. Continuous process for the efficient conversion of inorganic solid particles
WO2002092247A1 (en) 2001-05-17 2002-11-21 Cytomation, Inc. Flow cytometer with active automated optical alignment system
US7345758B2 (en) 2001-05-17 2008-03-18 Cytopeia Apparatus for analyzing and sorting biological particles
US20020182590A1 (en) 2001-05-25 2002-12-05 Vanderbilt University Determining protein function in cell culture using RNA interference
US20030048433A1 (en) 2001-06-01 2003-03-13 Jean-Marie Desjonqueres Cytometer signal processing system and method
FR2825987B1 (fr) 2001-06-19 2003-12-12 Valois Sa Distributeur de produit fluide
JP4903319B2 (ja) 2001-07-11 2012-03-28 日本電気株式会社 移動局及び周波数帯域検出方法
US7105355B2 (en) * 2001-07-18 2006-09-12 The Regents Of The University Of Michigan Flow cytometers and detection system of lesser size
US7704728B2 (en) 2001-07-18 2010-04-27 The University Of Michigan Microfluidic gravity pump with constant flow rate
FR2828281B1 (fr) 2001-08-02 2004-12-31 Biocytex Dispositif pour l'analyse d'un echantillon notamment par cytometrie de flux
WO2003020877A2 (en) 2001-09-01 2003-03-13 Pharmacia Corporation Staining and sorting genomes and chromosomes using sequence-specific polyamides
DE10151216A1 (de) 2001-10-16 2003-04-24 Zeiss Carl Jena Gmbh Verfahren zur optischen Erfassung von charakteristischen Größen einer beleuchteten Probe
US20030078703A1 (en) 2001-10-19 2003-04-24 Surromed, Inc. Cytometry analysis system and method using database-driven network of cytometers
US6838289B2 (en) 2001-11-14 2005-01-04 Beckman Coulter, Inc. Analyte detection system
US6831279B2 (en) 2001-11-27 2004-12-14 Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of National Defence Laser diode-excited biological particle detection system
KR20040070258A (ko) 2001-12-18 2004-08-06 톰슨 라이센싱 에스.에이. 네트워크 가능 신호 처리 장치의 셋업 메뉴들을 위해내부적으로 발생된 클로즈 캡셔닝/텔레-텍스팅
JP4263895B2 (ja) 2001-12-20 2009-05-13 ジョンソンディバーシー株式会社 液切れセンサおよびそれを用いた液体供給装置
WO2003056335A2 (de) 2001-12-31 2003-07-10 Institut für Physikalische Hochtechnologie e.V. Mikrovertiefungsarray zur grössenabhängigen sortierung oder separation von in einer strömenden flüssigkeit suspendierten zellen und verfahren zur untersuchung der funktionellen aktivität von einzelzellen
WO2003056330A2 (de) 2001-12-31 2003-07-10 Institut für Physikalische Hochtechnologie e.V. Zellsortiersystem zur grössenabhängigen sortierung oder separation von in einer strömenden flüssigkeit suspendierten zellen
WO2003062796A1 (en) 2002-01-22 2003-07-31 Dakocytomation Denmark A/S Environmental containment system for a flow cytometer
US6698627B2 (en) 2002-02-19 2004-03-02 Valois S.A.S. Fluid dispenser
US6849394B2 (en) * 2002-02-21 2005-02-01 Minitube Of America Compositions comprising reproductive cell media and methods for using such compositions
WO2003072765A1 (en) 2002-02-27 2003-09-04 The Regents Of The University Of Michigan Process for sorting motile particles from lesser-motile particles and apparatus suitable therefor
US20030175980A1 (en) 2002-03-14 2003-09-18 Hayenga Jon W. Ribbon flow cytometry and cell sorting
US7223371B2 (en) 2002-03-14 2007-05-29 Micronics, Inc. Microfluidic channel network device
CA2422224A1 (en) 2002-03-15 2003-09-15 Affymetrix, Inc. System, method, and product for scanning of biological materials
JP2004000144A (ja) 2002-03-29 2004-01-08 Aisin Seiki Co Ltd 細胞分離選別装置、細胞整列用基板
US7312085B2 (en) 2002-04-01 2007-12-25 Fluidigm Corporation Microfluidic particle-analysis systems
JP4196577B2 (ja) * 2002-04-05 2008-12-17 ニプロ株式会社 精液濾過フィルター
GB0214340D0 (en) 2002-06-21 2002-07-31 Multipex Photonics Ltd Apparatus for characterising a sample by an optical pulse
MXPA04012850A (es) 2002-06-28 2005-02-24 Monsanto Technology Llc Sistema de negocios para genetica porcina.
WO2004006916A1 (en) 2002-07-10 2004-01-22 Applied Research Systems Ars Holding Nv Use of compounds for increasing spermatozoa motility
BR0312843A (pt) 2002-07-22 2005-05-10 Xy Inc Sistema para processar células espermáticas
NZ538462A (en) 2002-08-01 2008-06-30 Xy Inc Low pressure sperm cell separation system
US7855078B2 (en) 2002-08-15 2010-12-21 Xy, Llc High resolution flow cytometer
US6598499B1 (en) 2002-09-10 2003-07-29 Illinois Tool Works Inc. Universal setting tool for adhesively bonded rebar and threaded rod anchors
US7169548B2 (en) 2002-09-13 2007-01-30 Xy, Inc. Sperm cell processing and preservation systems
JP3983151B2 (ja) 2002-09-25 2007-09-26 ダイワ精工株式会社 魚釣用スピニングリール
US7201875B2 (en) 2002-09-27 2007-04-10 Becton Dickinson And Company Fixed mounted sorting cuvette with user replaceable nozzle
US20040061853A1 (en) 2002-09-27 2004-04-01 Blasenheim Barry J. Prism-based flow cytometry excitation optics
US6941005B2 (en) 2002-11-01 2005-09-06 Coulter International Corp. Monitoring and control of droplet sorting
CA2506935A1 (en) 2002-11-20 2004-06-03 University Of Virginia Patent Foundation Isolation of sperm cells from other biological materials using microfabricated devices and related methods thereof
AU2003297304A1 (en) 2002-12-19 2004-07-22 Monsanto Technology Llc Method and means for early detection of pregnancy in animals by combination testing
CN100585720C (zh) 2003-02-19 2010-01-27 松下电器产业株式会社 再现装置、记录方法、再现方法
EP2308416B1 (en) 2003-03-28 2015-01-07 Inguran, LLC Apparatus and methods for providing sex-sorted animal sperm
BRPI0408852A (pt) * 2003-03-28 2006-04-04 Monsanto Technology Llc processo para a coloração de espermatozóide
CA3002927C (en) 2003-03-28 2021-05-04 Inguran, Llc Apparatus, methods and processes for sorting particles and for providing sex-sorted animal sperm
CN1232231C (zh) 2003-04-10 2005-12-21 李喜和 以精子分离、胚胎性别鉴定为基础的家畜性别控制方法
AU2004242121B2 (en) 2003-05-15 2010-06-24 Xy, Llc. Efficient haploid cell sorting for flow cytometer systems
US20050011582A1 (en) * 2003-06-06 2005-01-20 Haug Jeffrey S. Fluid delivery system for a flow cytometer
US7460223B2 (en) 2003-09-19 2008-12-02 Applied Biosystems Inc. Inverted orientation for a microplate
US7603199B2 (en) 2003-11-27 2009-10-13 Honda Motor Co., Ltd. Control device for mobile body
NZ530972A (en) 2004-02-05 2005-04-29 Embrionics Ltd A method and apparatus for orientating and selecting cells
US7892725B2 (en) 2004-03-29 2011-02-22 Inguran, Llc Process for storing a sperm dispersion
US7998700B2 (en) 2004-03-29 2011-08-16 Inguran, Llc Use of a composition which regulates oxidation/reduction reactions intracellularly and/or extracellulary in a staining or sorting process
AR049732A1 (es) 2004-07-22 2006-08-30 Monsanto Co Proceso para enriquecer una poblacion de celulas de esperma
WO2006015056A2 (en) 2004-07-27 2006-02-09 Dakocytomation Denmarks A/S Enhancing flow cytometry discrimination with geometric transformation
US20060118167A1 (en) 2004-12-03 2006-06-08 Xy, Inc. Pressure regulated continuously variable volume container for fluid delivery
US20060147894A1 (en) 2004-12-30 2006-07-06 Vicam, L.P. Jacketed vessel for holding semen for sex biasing mammals through artificial insemination and systems and methods for enhancing the probability of sex biasing using the same
US7527605B2 (en) 2005-06-28 2009-05-05 Ethicon Endo-Surgery, Inc. Medical-balloon inflator
US7591064B2 (en) * 2005-07-20 2009-09-22 Hitachi Global Storage Technologies Netherlands B.V. Method of fabrication for tape medium read head with unitary formation of multiple elements
US7618770B2 (en) * 2005-07-29 2009-11-17 Xy, Inc. Methods and apparatus for reducing protein content in sperm cell extenders
KR20080049740A (ko) 2005-09-02 2008-06-04 고쿠리츠 다이가쿠 호진 교토 다이가쿠 2차원 포토닉 결정 면발광 레이저 광원
WO2007047811A2 (en) 2005-10-19 2007-04-26 Scott Josephson Improved reproductive management
JP4126065B2 (ja) 2006-01-17 2008-07-30 株式会社 丸 七 製 作 所 精米機用残留米排出装置、およびそれを用いた精米機
DE102006035136A1 (de) 2006-07-29 2008-01-31 Evonik Degussa Gmbh Zink und Mangan enthaltende Oxidpartikel
JP4126081B1 (ja) 2007-08-17 2008-07-30 株式会社柳沢技研 傾斜微細孔加工方法
US8004661B2 (en) * 2008-06-30 2011-08-23 Microbix Biosystems Inc. Method and apparatus for sorting cells
JP5078929B2 (ja) 2009-03-17 2012-11-21 三井造船株式会社 セルソータおよびサンプル分別方法
US9470617B2 (en) 2010-04-07 2016-10-18 Sony Corporation Flow cytometry apparatus

Also Published As

Publication number Publication date
CA2518882C (en) 2017-05-09
US20220106560A1 (en) 2022-04-07
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EP2305171A3 (en) 2011-08-10
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EP2309244B1 (en) 2022-03-16
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US8198093B2 (en) 2012-06-12
WO2004088283A2 (en) 2004-10-14
AR043956A1 (es) 2005-08-17
DK3511693T3 (da) 2022-11-14
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AR075143A2 (es) 2011-03-09
EP2298231B1 (en) 2015-12-02
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MX345106B (es) 2017-01-16
US8206988B2 (en) 2012-06-26
US20130224786A1 (en) 2013-08-29
HUE028498T2 (en) 2016-12-28
JP2012135308A (ja) 2012-07-19
US8535938B2 (en) 2013-09-17
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BR122017017790B1 (pt) 2018-06-12
EP2194379A1 (en) 2010-06-09
ES2930062T3 (es) 2022-12-05
DK2194379T3 (en) 2014-12-01
ES2569617T3 (es) 2016-05-11
DK2308418T3 (da) 2016-01-25
EP2305173B1 (en) 2016-05-11
CN102818761B (zh) 2015-07-01
US20150211978A1 (en) 2015-07-30
EP2308417A3 (en) 2011-08-03
JP2006524054A (ja) 2006-10-26
US8691584B2 (en) 2014-04-08
EP2309246A3 (en) 2011-08-03
EP2308419A3 (en) 2011-08-03
US20110269175A1 (en) 2011-11-03
DK2309244T3 (da) 2022-06-20
EP2305172A2 (en) 2011-04-06
EP2306173A2 (en) 2011-04-06
BRPI0408857B1 (pt) 2018-09-11
US8748183B2 (en) 2014-06-10
US8206987B2 (en) 2012-06-26
US7943384B2 (en) 2011-05-17
US8664006B2 (en) 2014-03-04
US8198092B2 (en) 2012-06-12
CN1795382A (zh) 2006-06-28
MX350776B (es) 2017-09-15
US20110217722A1 (en) 2011-09-08
ES2534395T3 (es) 2015-04-22
CN104862273A (zh) 2015-08-26
EP2309244A3 (en) 2012-01-04
JP5959594B2 (ja) 2016-08-02
US20130224726A1 (en) 2013-08-29
DK2305832T3 (da) 2022-05-23
WO2004088283A3 (en) 2005-08-11
DK2305172T3 (en) 2016-08-22
DK2308416T3 (da) 2015-04-13
PL2308420T3 (pl) 2017-06-30
US8241914B2 (en) 2012-08-14
US11104880B2 (en) 2021-08-31
ATE453864T1 (de) 2010-01-15
EP2357464A1 (en) 2011-08-17
US8709817B2 (en) 2014-04-29
EP2306174B1 (en) 2016-05-11
EP2357464B1 (en) 2016-03-02
DE602004024874D1 (de) 2010-02-11
EP2309246B1 (en) 2016-03-23
US8709825B2 (en) 2014-04-29
CA3074799A1 (en) 2004-10-14
MXPA05010492A (es) 2006-05-25
EP2305172A3 (en) 2011-08-10
CN102818761A (zh) 2012-12-12
US20130224733A1 (en) 2013-08-29
ES2561816T3 (es) 2016-03-01
US20130224727A1 (en) 2013-08-29
DK2308419T3 (da) 2016-06-06
EP2309244A2 (en) 2011-04-13
HUE030055T2 (en) 2017-04-28
ES2563171T3 (es) 2016-03-11
US8617904B2 (en) 2013-12-31
US9377390B2 (en) 2016-06-28
NZ564309A (en) 2009-07-31
EP2306173A3 (en) 2011-08-03
US20110215111A1 (en) 2011-09-08
EP2309246A2 (en) 2011-04-13
NZ577678A (en) 2010-10-29
US8623658B2 (en) 2014-01-07
US9040304B2 (en) 2015-05-26
EP1608963A2 (en) 2005-12-28
NZ587918A (en) 2011-12-22
JP2010207240A (ja) 2010-09-24
CN100523811C (zh) 2009-08-05
EP2332492A3 (en) 2011-08-03
US20130171683A1 (en) 2013-07-04
EP2305172B1 (en) 2016-05-11
ES2910439T3 (es) 2022-05-12
EP2305832B1 (en) 2022-03-09
MX345105B (es) 2017-01-16
CN102818760A (zh) 2012-12-12
CN102818760B (zh) 2015-07-29
EP2332492A2 (en) 2011-06-15
DK2298231T3 (en) 2016-02-01
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