ES2267100T3 - Olignucleotidos inmunomoduladores. - Google Patents
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Abstract
SE DESCRIBEN OLIGONUCLEOTIDOS QUE CONTIENEN DINUCLEOTIDOS CPG INMETILADOS Y UTILIDADES TERAPEUTICAS BASADAS EN SU CAPACIDAD DE ESTIMULAR UNA RESPUESTA INMUNE EN UN SUJETO. TAMBIEN SE DESCRIBEN TERAPIAS PARA TRATAMIENTO DE ENFERMEDADES ASOCIADAS CON ACTIVACION DEL SISTEMA INMUNE QUE SE INICIAN MEDIANTE DINUCLEOTIDOS CPG INMETILADOS EN UN SUJETO QUE COMPRENDEN LA ADMINISTRACION AL SUJETO DE OLIGONUCLEOTIDOS QUE NO CONTENGAN SECUENCIAS DE CPG INMETILADAS (ES DECIR, SECUENCIAS DE CPG METILADAS O NO SECUENCIA DE CPG) PARA DAR COMO RESULTADO ACIDOS NUCLEICOS DE CPG INMETILADOS PARA UNION. ADEMAS SE DESCRIBE CPG METILADO QUE CONTIENE DINUCLEOTIDOS PARA USO EN TERAPIAS ANTISENTIDO O COMO SONDAS DE HIBRIDACION IN VIVO, Y OLIGONUCLEOTIDOS INMUNOINHIBIDORES PARA USO COMO TERAPEUTICOS ANTIVIRALES.
Description
Oligonucléotidos inmunomoduladores.
En lo años 70, varios investigadores informaron
de la unión de ADN de alto peso molecular a membranas celulares
(Lerner, R.A., W. Meinke y D.A. Goldstein. 1971.
"Membrane-associated DNA in the cytoplasm of
diploid human lymphocites". Proc. Natl. Acad. Sci. USA
68:1212; Agrawal, S.K., R.W. Wagner, P.K. McAllister y B.
Rosenberg. 1975.
"Cell-surface-associated nucleic
acid in tumorigenic cells made visible with
platinum-pyrimidine complexes by electron
microscopy". Proc. Natl. Acad. Sci. USA 72:928). En 1985,
Bennett et al. presentaron la primera evidencia de que la
unión de ADN a linfocitos es similar a una interacción ligando
receptor: la unión es saturable, competitiva y conduce a
endocitosis y degradación de ADN (Bennett, R.M., G.T. Gabor y M.M.
Merritt. 1985. "DNA binding to human leukocytes. Evidence for a
receptor-mediated association, internalization, and
degradation of DNA". J. Clin. Invest.76:2182). Al igual
que el ADN, los oligodesoxirribonucleótidos (ODNs) son capaces de
entrar en células de una manera saturable, independiente de la
secuencia y dependiente de la temperatura y la energía (examinado
en Jaroszewski, J.W. y J.S. Cohen. 1991. "Cellular uptake of
antisense oligodeoxynucleotides". Advanced Drug Delivery
Reviews 6:235; Akhtar, S., Y. Shoji y R.L. Juliano. 1992.
"Pharmaceutical aspects of the biological stability and membrane
transport characteristics of antisense oligonucleotides". En:
Gene Regulation: Biology of Antisense RNA y DNA. R.P.
Erickson y J.G. Izant, reds. Raven Press Ltd. Nueva York, págs. 133;
y Zhao, Q., T. Waldschmidt, E. Fisher, C.J. Herrera y A.M. Krieg,
1994. "Stage specific oligonucleotide uptake in murine bone
marrow B cell precursors". Blood, 84:3660). No se ha
clonado todavía un receptor para absorción de ADN u ODN, y no está
claro aún si la unión de ODN y la absorción celular tienen lugar a
través del mismo mecanismo o uno diferente del de ADN de alto peso
molecular.
Se ha mostrado que la absorción de ODN de
linfocitos está regulada por activación celular. Las células del
bazo estimuladas con el mitógeno de células B LPS ha aumentado
drásticamente la absorción de ODN en la población de células B,
mientras que las células del bazo tratadas con el mitógeno de
células T Con A mostraron una absorción de ODN aumentada por
células T pero no B (Krieg, A.M., F. Gmelig-Meyling,
M.F. Gourley, W.J. Kisch, L.A. Chrisey y A.D. Steinberg. 1991.
"Uptake of oligodeoxyribonucleotides by lymphoid cells is
heterogeneous and inducible". Antisense Research and
Development 1:161).
Se han evaluado extensamente varios
polinucleótidos como modificadores de la respuesta biológica. Quizás
el mejor ejemplo es poli (I,C), que es un inductor eficaz de la
producción de IFN así como un activador de macrófagos e inductor de
la actividad de NK (Talmadge, J.E., J. Adams, H. Phillips, M.
Collins, B. Lenz, M. Schneider, E. Schlick, R. Ruffmann, R.H.
Wiltrout y M.A. Chirigos. 1985. "Immunomodulatory effects in mice
of polynosinic-polycytidylic acid complexed with
poly-L-:-lysine and carboxymethylcellulose".
Cancer Res. 45:1058; Wiltrout, R.H., R.R. Salup, T.A.
Twilley y J.E. Talmadge. 1985. "Immunomodulation of natural killer
activity by polyribonucleotides". J. Biol. Resp. Mod.
4:512; Krown, S.E. 1986. "Interferons and interferon inducers
in cancer treatment". Sem. Oncol. 13:207; y Ewel, C.H.,
S.J. Urba, W.C. Kopp, J.W. Smith II, R.G. Steis, J.L. Rossio, D.L.
Longo, M.J. Jones, W.G. Alvord, C.M. Pinsky, J.M. Beveridge, K.L.
McNitt y S.P. Creekmore. 1992.
"Polynosinic-polycytidylic acid complexed with
poly-L-lysine and
carboxymethylcellulose in combination with interleukin 2 in patients
with cancer: clinical and immunological effects". Canc. Res.
52:3005). Parece que esta activación de NK de ratón puede ser
debida únicamente a inducción de la secreción de IFN \beta
(Ishikawa, R. y C.A. Biron. 1993. "IFN induction and associated
changes in splenic leukocyte distribution". J. Immunol.
150:3713). Esta activación fue específica para el azúcar ribosa
porque la desoxirribosa fue ineficaz. Su eficaz actividad
antitumores in vitro condujo a varias pruebas clínicas
usando poli(I,C) acomplejado con
poli-L-lisina y carboximetilcelulosa
(para reducir la degradación por ARNsa) (Talmadge, J.E. et
al., 1985, citado antes; Wiltrout, R.H. et al., 1985,
citado antes); Krown, S.E., 1986, citado antes); y Ewel, C.H. et
al., 1992, citado antes). Desgraciadamente, los efectos
secundarios tóxicos han impedido así mucho a poli(I,C)
convertirse en un agente terapéutico útil.
Los ribonucleótidos de guanina sustituidos en
posición C8 con un grupo bromo o tiol son mitógenos de células B y
pueden sustituir a "factores de diferenciación de células B"
(Feldbush, T.L. y Z.K. Ballas. 1985.
"Lymphokine-like activity of
8-marcaptoguanosine: induction of T and B cell
differentiation". J. Immunol. 134:3204; y Goodman, M.G.
1986. "Mechanism of synergy between T cell signals and
C8-substituted guanine nucleosides in humoral
immunity: B lymphotropic cytokines induce responsiveness to
8-mercaptoguanosine". J. Immunol.
136:3335). Las 8-marcaptoguanisina y
8-bromoguanosina también pueden sustituir el
requisito de citoquina para la generación de CTL restringida por
MHC (Feldbush, T.L., 1985, citado antes), aumentar la actividad de
NK de ratón (Koo, G.C., M.E. Jewell, C.L. Manyak, N.H. Sigal y L.S.
Wicker, 1988. "Activation of murine natural killer cells and
macrophages by 8-bromoguanosine". J. Immunol.
140;3249) y tener sinergia con IL-2 para inducir
la generación de LAK de ratón (Thompson, R.A. y Z.K. Ballas. 1990.
"Lymphokine-activated killer (LAK) cells. V.
8-Mercaptoguanosine as an
IL-2-sparing agent in LAK
generation". J. Immunol. 145:3524). Las actividades de
aumento de NK y LAK de estas guanosinas
C8-sustituidas parecen ser debidas a su inducción de
IFN (Thompson, R.A. et al. 1990, citado antes).
Recientemente, se encontró que una timidina
5'-trifosforilada producida por una microbacteria
era mitogénica para un subgrupo de células \gamma\delta T
humanas (Constant, P., F. Davodeau, M.-A. Peyrat, Y. Poquet, G.
Puzo, M. Bonneville y J.-J. Fournie. 1994. "Stimulation of human
\gamma\delta T cells by nonpeptidic mycobacterial ligands"
Science 264:267). Este informe indicaba la posibilidad de que
el sistema inmune pueda tener formas evolucionadas para responder
preferentemente a ácidos nucleicos microbianos.
Varias observaciones sugieren que ciertas
estructuras de ADN pueden tener también el potencial de activar
linfocitos. Por ejemplo, Bell et al. informaban de que
complejos de proteína-ADN nucleosómicos (pero no ADN
desprovisto) en sobrenadantes de células de bazo causaban
proliferación de células B y secreción de inmunoglobulina (Bell,
D.A., B. Morrison y P. VandenBygaart. 1990. "Immunogenic
DNA-related factors". J. Clin. Invest.
85:1487). En otros casos, se ha informado de que ADN
desprovisto tiene efectos inmunes. Por ejemplo, Messina et
al. han informado recientemente de que fragmentos de 260 a 800
pb de poli (dG)\bullet(dC) y poli (dG\bulletdC)
eran mitogénicos para células B (Messina, J.P., G.S. Gilkeson y D.S.
Pisetsky. 1993. "The influence of DNA structure on the in
vitro stimulation of murine lymphocytes by natural and synthetic
polynucleotide antigens". Cell. Immunol. 147:148).
Tokunaga et al. han informado de que dG\bulletdC induce
actividad de \gamma-IFN y NK (Tokunaga, S.
Yamamoto y K. Namba. 1988. "A synthetic
single-stranded DNA, poly(dG,dC), induces
interferon-\alpha/\beta and –\gamma, augments
natural killer activity, and suppresses tumor growth" Jpn. J.
Cancer Res. 79:682). Aparte de tales secuencias de
homopolímeros artificiales, Pisetsky et al. informaban de que
ADN de mamífero puro no tiene efectos inmunes detectables, pero que
ADN de ciertas bacterias induce activación de células B y secreción
de inmunoglobulina (Messina, J.P., G.S. Gilkeson y D.S. Pisetsky.
1991. "Stimulation of in vitro murine lymphocyte
proliferation by bacterial DNA". J. Immunol. 147:1759).
Suponiendo que estos datos no resultan de algún contaminante
inusual, estos estudios sugerían que una estructura particular u
otra característica de ADN bacteriano lo hace capaz de provocar la
activación de células B. Investigaciones de secuencias de ADN
microbacteriano han demostrado que ODN que contiene ciertas
secuencias palíndrome pueden activar células NK (Yamamoto, S., T.
Yamamoto, T. Kataoka, E. Kuramoto, O. Yano y T. Tokunaga. 1992.
"Unique palindromic sequences in synthetic oligonucleotides are
required yo induce INF and augment INF-mediated
natural killer activity". J. Immunol. 148:4072; Kuramoto,
E., O. Yano, Y. Kimura, M. Baba, T. Makino, S. Yamamoto, T.
Yamamoto, T. Kataoka y T. Tokunaga. 1992. "Oligonucleotide
sequences required for natural killer cell activation". Jpn.
J. Cancer Res. 83:1128; y documento EP0 468 520 A2).
Se ha informado de que varios ODN modificados
con fosforotioato inducen estimulación de células B in vitro
o in vivo (Tanaka, T., C.C. Chu y W.E. Paul. 1992. "An
antisense oligonucleotide complementary to a sequence in
I\gamma2b increases \gamma2b germline transcripts, stimulates B
cell DNA synthesis, and inhibits immunoglobulin secretion".
J. Exp. Med. 175:597; Branda, R.F., A.L. Moore, L. Mathews,
J.J. McCormack y G. Zon.1993. "Immune stimulation by an antisense
oligomer complementary to the rev gene of HIV-1".
Biochem. Pharmacol. 45:2037; McIntyre, K.W., K.
Lombard-Gillooly, J.R. Perez, C. Kunsch, U.M.
Sarmiento, J.D. Larigan, K.T. Landreth y R. Narayanan. 1993. "A
sense phosphorothioate oligonucleotide directed to the inhibition
codon of transcription factor NF-\kappa \beta
T65 causes sequence-specific immune stimulation".
Antisense Res. Develop. 3:309; y Pisetsky, D.S. y C.F.
Reich. 1993. "Stimulation of murine lymphocyte proliferation by a
phosphorothioate oligonucleotide with antisense activity for herpes
simplex virus". Life Sciences 54:101). Estos informes no
sugieren un motivo estructural común o elemento de secuencia en
estos ODN que puedan explicar sus efectos.
La proteína de unión al elemento de respuesta
cAMP (CREB) y el factor de transcripción activante (ATF) o familia
CREB/ATF de factores de transcripción es una clase que se expresa
omnipresente de factores de transcripción de los que se han clonado
hasta ahora 11 miembros (examinado en de Groot, R.P. y P.
Sassone-Corsi: "Hormonal control of gene
expression: Multiplicity and versatility of cyclic adenosine
3',5'-monophosphate-responsive
nuclear regulators", Mol. Endocrin. 7:145, 1993; Lee,
K.A.W. y N. Masson: "Transcriptional regulation by CREB and its
relatives". Biochim., Biophys. Acta 1174:221, 1993). Todos
pertenecen a la clase de proteínas de región básica/cremallera de
leucina (bZip). Todas las células parecen expresar una o más
proteínas CREB/ATF, pero los miembros expresados y la regulación
del empalme de mARN parecen ser específicos para tejidos. El empalme
diferencial de dominios de activación puede determinar si una
proteína CREB/ATF particular será un inhibidor o activador de
transcripción. Muchas proteínas CREB/ATF activan transcripción
vírica, pero algunas variantes de empalme que carecen del dominio
de activación son inhibidoras. Las proteínas CREB/ATF pueden unirse
a ADN como homo- o heterodímeros a través del elemento de respuesta
de cAMP, el CRE, la forma de consenso de la que es la secuencia no
metilada TGACGTC (se suprime la unión si el CpG está metilado)
(Iguchi-Ariga, S.M.M. y W. Schaffner: "CpG
methylation of the cAMP-responsive enhancer/promoter
sequence TGACGTCA abolishes specific factor binding as well as
transcriptional activation". Genes & Develop. 3:612,
1989).
La activación transcripcional del CRE aumenta
durante la activación de células B (Xie, H., T.C. Chiles y T.L.
Rothstein: "Induction of CREB activity via the surface Ig receptor
of B cells". J. Immunol. 151:880, 1993). Las proteínas
CREB/ATF parecen regular la expresión de múltiples genes a través
del CRE, incluyendo genes importantes inmunológicamente tales como
fos, jun B, Rb-1, IL-6,
IL-1 (Tsukada, J., K. Saito, W.R. Waterman, A.C.
Webb y P.E. Auron: "Transcription factors NF-IL6
and CREB recognize a common essential site in the human
prointerleukin 1\beta gene". Mol. Cell. Biol. 14:7285,
1994; Gray, G.D., O.M. Hernandez, D. Hebel, M. Root, J.M.
Pow-Sang y E. Wickstrom: "Antisense DNA inhibition
of tumor growth induced by c-Ha-ras
oncogene in nude mice". Cancer Res. 53:577, 1993),
IFN-\beta (Du, W. y T. Maniatis: "An ATF/CREB
binding site protein is required for virus induction of the human
interferon B gene". Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:2150,
1992), TGF-\beta1 (Asiedu, C.K., L. Scott, R.K.
Assoian, M. Ehrlich: "Binding of AP-1/CREB
proteins and of MDBP to contiguous sites downstream of the human
TGF-B1 gene". Biochim. Biophys. Acta
1219:55, 1994). TGF-\beta2, MHC clase II
(Cox, P.M. y C.R. Goding: "An ATF/CREB binding motif is required
for aberrant constitutive expression of the MHC class II DRa
promoter and activation by SV40 T-antigen".
Nucl. Acids Res. 20:4881, 1992). E-selectina,
GM-CSF, CD-8\alpha, el gen de la
región constante del linaje germinal Ig\alpha, el gen de TCR
V\beta y el antígeno nuclear de células proliferantes (Huang, D.,
P.M. Shipman-Appasamy, D.J. Orten, S.H. Hinrichs y
M.B. Prystowsky: "Promoter activity of the
proliferating-cell nuclear antigen gene is
associated with inducible CRE-binding proteins in
interleukin 2-stimulated T lymphocytes". Mol.
Cell Biol. 14:4233, 1994). Además de la activación a través del
trayecto de cAMP, CREB puede mediar también en respuestas
transcripcionales a cambios en la concentración de Ca^{++}
intracelular (Sheng, M., G. McFadden y M.E. Greenberg: "Membrane
depolarization and calcium induce c-fos
transcription via phosphorylation of transcription factor CREB".
Neuron 4:571, 1990).
El papel de interacciones
proteína-proteína en activación transcripcional por
proteínas CREB/ATF parece ser extremadamente importante. La
activación de CREB a través del trayecto de AMP cíclico requiere
proteína quinasa A (PKA), que fosforila CREB^{341} en ser^{133}
y le permite unirse a una proteína clonada recientemente, CBP
(Kwok, R.P.S., J.R. Lundblad, J.C. Chrivia, J.P. Richards, H.P.
Bachinger, R.G. Brennan, S.G.E. Roberts, M.R. Green y R.H. Goodman:
"Nuclear protein CBP is a coactivator for the transcription factor
CREB". Nature 370:223, 1994; Arias, J., A.S. Alberts, P.
Brindle, F.X. Claret, T. Smea, M. Karin, J. Feramisco y M. Montminy:
"Activation of cAMP and mitogen responsive genes relies on a
common nuclear factor". Nature 370:226, 1994; CBP
interactúa a su vez con el factor de transcripción basal TFIIB
causando transcripción aumentada. También se ha informado de que
CREB interactúa con dTAFII 110, un factor asociado a proteína de
unión de TATA cuya unión puede regular transcripción (Ferreri, K.
G. Gill y M. Montminy: "The cAMP-regulated
transcription factor CREB interacts with a component of the TFIID
complex". Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:1210, 1994).
Además de estas interacciones, las proteínas CREB/ATF pueden unirse
específicamente a otros múltiples factores nucleares (Hoeffler,
J.P., J.W. Lustbader y C.-Y. Chen: "Identification of multiple
nuclear factors that interact with cyclic adenosine
3',5'-monophosphate response
element-binding protein and activating transcription
factor-2 by protein-protein
interactions". Mol. Endocrinol. 5:256, 1991), pero el
significado biológico de muchas de estas interacciones es
desconocido. Se piensa normalmente que CREB se une a ADN como un
homodímero o como un heterodímero con otras varias proteínas.
Sorprendentemente, monómeros de CREB activan constitutivamente la
transcripción (Krajewski, W. y K.A.W. Lee: "A monomeric derivative
of the cellular transcription factor CREB functions as a
constitutive activator". Mol. Cell. Biol. 14:7204,
1994).
Aparte de su papel crítico para regular la
transcripción celular, se ha mostrado recientemente que proteínas
CREB/
ATF son subvertidas por algunos virus y retrovirus infecciosos, que las requieren para replicación vírica. Por ejemplo, el promotor temprano inmediato de citomegalovirus, uno de los promotores de mamífero conocidos más fuertes, contiene once copias del CRE que son esenciales para la función de promotor (Chang, Y.-N., S. Crawford, J. Stall, D.R. Rawlins, K.-T. Jeang y G.S. Hayward: "The palindromic series I repeats in the simian cytomegalovirus major immediate.early-promoter behave as both strong basal enhancers and cyclic AMP response elements". J. Virol. 64:264, 1990). Al menos algunos de los efectos activantes transcripcionales de la proteína E1A de adenovirus, que induce muchos promotores, son debidos a su unión al dominio de unión de ADN de la proteína CREB/ATF, ATF-2, que media en la activación de la transcripción inducible por E1A (Liu, F. y M.R. Green: "Promoter targeting by adenovirus E1a through interaction with different cellular DNA-binding domains". Nature 368:520, 1994). Se ha sugerido también que E1A se une a la proteína de unión a CREB, CBP (Arany, Z., W.R. Sellers, D.M. Livingston y R. Eckner: "E1A-associated p300 and CREB-associated CBP belong to a conserved family of coactivators". Cell 77:799, 1994). El virus-I linfotrópico T humano (HTLV-1), el retrovirus que causa leucemia de células T humanas y paresis espástica tropical, requiere también proteínas CREB/ATF para replicación. En este caso, el retrovirus produce una proteína, Tax, que se une a proteínas CREB/ATF y las redirige desde sus lugares de unión celular normales a diferentes secuencias de ADN (flanqueadas por secuencias ricas en G y C) presentes dentro del aumentador transcripcional de HTLV (Paca-Uccaralertkum, S., L.-J. Zhao, N. Adya, J.V. Cross, B.R. Cullen, I.M. Boros y C.-Z. Giam: "In vitro selection of DNA elements highly responsive to the human T-cell lymphotropic virus type I transcriptional activator, Tax". Mol. Cell. Biol. 14:456, 1994; Adya, N., L.-J. Zhao, W. Huang, I. Boros y C.-Z. Giam: "Expansion of CREB's DNA recognition specificity by Tax results from interaction with Ala-Ala-Arg at positions 282-284 near the conserved DNA-binding domain of CREB". Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:5642, 1994).
ATF son subvertidas por algunos virus y retrovirus infecciosos, que las requieren para replicación vírica. Por ejemplo, el promotor temprano inmediato de citomegalovirus, uno de los promotores de mamífero conocidos más fuertes, contiene once copias del CRE que son esenciales para la función de promotor (Chang, Y.-N., S. Crawford, J. Stall, D.R. Rawlins, K.-T. Jeang y G.S. Hayward: "The palindromic series I repeats in the simian cytomegalovirus major immediate.early-promoter behave as both strong basal enhancers and cyclic AMP response elements". J. Virol. 64:264, 1990). Al menos algunos de los efectos activantes transcripcionales de la proteína E1A de adenovirus, que induce muchos promotores, son debidos a su unión al dominio de unión de ADN de la proteína CREB/ATF, ATF-2, que media en la activación de la transcripción inducible por E1A (Liu, F. y M.R. Green: "Promoter targeting by adenovirus E1a through interaction with different cellular DNA-binding domains". Nature 368:520, 1994). Se ha sugerido también que E1A se une a la proteína de unión a CREB, CBP (Arany, Z., W.R. Sellers, D.M. Livingston y R. Eckner: "E1A-associated p300 and CREB-associated CBP belong to a conserved family of coactivators". Cell 77:799, 1994). El virus-I linfotrópico T humano (HTLV-1), el retrovirus que causa leucemia de células T humanas y paresis espástica tropical, requiere también proteínas CREB/ATF para replicación. En este caso, el retrovirus produce una proteína, Tax, que se une a proteínas CREB/ATF y las redirige desde sus lugares de unión celular normales a diferentes secuencias de ADN (flanqueadas por secuencias ricas en G y C) presentes dentro del aumentador transcripcional de HTLV (Paca-Uccaralertkum, S., L.-J. Zhao, N. Adya, J.V. Cross, B.R. Cullen, I.M. Boros y C.-Z. Giam: "In vitro selection of DNA elements highly responsive to the human T-cell lymphotropic virus type I transcriptional activator, Tax". Mol. Cell. Biol. 14:456, 1994; Adya, N., L.-J. Zhao, W. Huang, I. Boros y C.-Z. Giam: "Expansion of CREB's DNA recognition specificity by Tax results from interaction with Ala-Ala-Arg at positions 282-284 near the conserved DNA-binding domain of CREB". Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91:5642, 1994).
La presente invención se basa en el hallazgo de
que ciertos oligonucleótidos que contienen dinucleótidos de
citosina-guanina (CpG) no metilados activan
linfocitos como se evidencia por datos in vitro e in
vivo. En base a este hallazgo, la invención presenta, en un
aspecto, nuevas composiciones de oligonucleótidos
inmunoestimuladores.
Por consiguiente, en un primer aspecto, la
presente invención proporciona una composición, de uso como
medicamento, que comprende una vacuna y un oligonucleótido
inmunoestimulador sintético de un tamaño de al menos 8 bases, que
contiene al menos un digonucleótido CpG no metilado y es un
coadyuvante para la vacuna.
En un segundo aspecto, la invención proporciona
el uso de una composición según el primer aspecto de la invención,
para la fabricación de un medicamento para vacunar a un sujeto.
En un aspecto adicional, la invención
proporciona el uso de un oligonucleótido inmunoestimulador sintético
de al menos 8 bases de tamaño, que contiene al menos un
dinucleótido CpG no metilado, para la fabricación de un medicamento
a administrar a un sujeto conjuntamente con una vacuna, como
coadyuvante de la vacuna.
Se describen en las reivindicaciones adjuntas
realizaciones y aspectos preferidos de la invención.
En una realización preferida, un
oligonucleótido inmunoestimulador es sintético, tiene de 8 a
100 bases de tamaño y contiene un motivo CpG mitogénico de consenso
representado por la fórmula
5' \
X_{1}X_{2}CGX_{3}X_{4} \
3'
- en la que C y G son no metilados, X_{1}, X_{2}, X_{3} y X_{4} son nucleótidos y no está presente una secuencia de trinucleótido GCG en o cerca de los términos 5' y 3'.
Para facilitar la absorción en células, los
oligonucleótidos inmunoestimuladores que contienen CpG están
preferiblemente en el intervalo de 8 a 40 bases de tamaño. Puede
obtenerse una inmunoestimulación prolongada usando oligonucleótidos
estabilizados, particularmente oligonucleótidos estabilizados con
fosforotioato. Se ha observado una actividad inmunoestimuladora
aumentada cuando X_{1}X_{2} es el dinucleótido GpA y/o
X_{3}X_{4} es el dinucleótido es más preferiblemente TpC o
también TpT. Se ha observado una actividad inmunoestimuladora
aumentada adicional cuando el motivo de consenso
X_{1}X_{2}CGX_{3}X_{4} está precedido en el extremo 5' por
un T.
En otro aspecto, la invención presenta métodos
útiles, que se basan en la actividad inmunoestimuladora de los
oligonucleótidos. Por ejemplo, pueden obtenerse linfocitos de un
sujeto y estimularse ex vivo por contacto con un
oligonucleótido apropiado; o un oligonucleótido que contenga CpG no
metilado puede administrarse a un sujeto para facilitar activación
in vivo de linfocitos de un sujeto. Los linfocitos activados,
estimulados por los métodos descritos aquí (por ejemplo, ex
vivo o in vivo), pueden aumentar la respuesta inmune de
un sujeto. Los oligonucleótidos inmunoestimuladores pueden usarse
por tanto para tratar, prevenir o mejorar una deficiencia del
sistema inmune (por ejemplo, un tumor o cáncer o una infección
vírica, fúngica, bacteriana o parasitaria en un sujeto). Además,
pueden administrarse también oligonucleótidos inmunoestimuladores
como coadyuvante de vacuna, para estimular la respuesta de un
sujeto a una vacuna.
Otros aspectos y ventajas de la invención se
harán más evidentes a partir de las siguientes descripción detallada
y reivindicaciones.
Según se usan aquí, los siguientes términos y
frases tendrán los significados indicados a continuación:
Un "oligonucleótido" u "oligo"
significará nucleótidos múltiples (es decir, moléculas que
comprenden un azúcar (por ejemplo, ribosa o desoxirribosa) enlazado
a un grupo fosfato y a una base orgánica intercambiable, que es una
pirimidina sustituida (por ejemplo, citosina (C), timina (T) o
uracilo (U)) o una purina sustituida (por ejemplo, adenina (A) o
guanina (G)). El término "oligonucleótido" según se usa aquí se
refiere a oligorribonucleótidos (ORNs) y
oligodesoxirribonucleótidos (ODNs). El término
"oligonucleótido" incluirá también oligonucleósidos (es decir,
un oligonucleótido menos el fosfato) y cualquier otra base orgánica
que contenga polímero. Pueden obtenerse oligonucleótidos de fuentes
de ácidos nucleicos existentes (por ejemplo, genómicas o cADN), pero
son preferiblemente sintéticos (por ejemplo, producidos por
síntesis de oligonucleótidos).
Un "oligonucleótido estabilizado"
significará un oligonucleótido que sea relativamente resistente a
degradación in vivo (por ejemplo, mediante una exo- o
endo-nucleasa). Los oligonucleótidos estabilizados
preferidos de la presente invención tienen una cadena principal de
fosfato modificada. Los oligonucleótidos especialmente preferidos
tienen una cadena principal de fosfato modificada con fosforotioato
(es decir, al menos uno de los oxígenos de fosfato está sustituido
por azufre). Otros oligonucleótidos estabilizados incluyen: análogos
de ADN no iónicos, tales como alquil y
aril-fosfonatos (en los que el oxígeno de fosfonato
cargado está sustituido con un grupo alquilo o arilo), fosfodiéster
y alquilfosfotriésteres, en los que el resto de oxígeno cargado
está alquilado. Se ha mostrado también que oligonucleótidos que
contienen un diol, tal como tetraetilenglicol o hexaetilenglicol,
en alguno o ambos términos son sustancialmente resistentes a
degradación por nucleasa.
Un "oligonucleótido inmunoestimulador",
"oligonucleótido que contiene CpG inmunoestimulador" o "CpG
ODN" se refiere a un oligonucleótido que contiene una secuencia
de dinucleótido de citosina, guanina y estimula (por ejemplo, tiene
un efecto mitogénico) en linfocitos de vertebrados. Los
oligonucleótidos inmunoestimuladores preferidos tienen un tamaño de
8 a 100 bases y contienen un motivo CpG mitogénico de consenso
representado por la fórmula:
5' \
X_{1}X_{2}CGX_{3}X_{4} \
3'
- en la que C y G son no metilados, X_{1}, X_{2}, X_{3} y X_{4} son nucleótidos y no está presente una secuencia de trinucleótido GCG en o cerca de los términos 5' y 3'.
\newpage
Preferiblemente, los oligonucleótidos
inmunoestimuladores varían de tamaño entre 8 y 40 bases. Además, los
oligonucleótidos inmunoestimuladores son preferiblemente
oligonucleótidos estabilizados, son particularmente preferidos
oligonucleótidos estabilizados con fosforotioato. En una realización
preferida, X_{1}X_{2} es el dinucleótido GpA. En otra
realización preferida, X_{3}X_{4} es preferiblemente el
dinucleótido TpC o también TpT. En una realización particularmente
preferida, el motivo de consenso X_{1}X_{2}CGX_{3}X_{4}
está precedido en el extremo 5' por un T. Son secuencias de consenso
particularmente preferidas TGACGTT o TGACGTC.
Puede obtenerse una inmunoestimulación
prolongada usando oligonucleótidos estabilizados, particularmente
estabilizados con fosforotioato.
Una "secuencia palindrómica" significará
una repetición invertida (es decir, una secuencia tal como
ABCDEED'C'
B'A', en la que A y A' son bases capaces de formar los pares de bases de Watson-Crick usuales). In vivo, tales secuencias pueden formar estructuras de doble cadena.
B'A', en la que A y A' son bases capaces de formar los pares de bases de Watson-Crick usuales). In vivo, tales secuencias pueden formar estructuras de doble cadena.
Un "complejo de entrega de oligonucleótido"
significará un oligonucleótido asociado con (por ejemplo, unido
iónica o covalentemente a; o encapsulado dentro de) un medio de
fijación de objetivo (por ejemplo, una molécula que produce unión
de mayor afinidad a las superficies de una célula objetivo (por
ejemplo, una célula B y una célula destructora natural (NK)) y/o
absorción celular aumentada por células objetivo). Los ejemplos de
complejos de entrega de oligonucleótidos incluyen oligonucleótidos
asociados con: un esterol (por ejemplo, colesterol), un lípido (por
ejemplo, un lípido catiónico, virosoma o liposoma), o un agente de
unión específico para una célula objetivo (por ejemplo, un ligando
reconocido por un receptor específico de la célula objetivo). Los
complejos preferidos deben ser suficientemente estables in
vivo para impedir desacoplamiento significativo antes de
internalización por la célula objetivo. No obstante, el complejo
debe ser divisible en condiciones apropiadas dentro de la célula de
manera que se libere el oligonucleótido en forma funcional.
Una "deficiencia del sistema inmune"
significará una enfermedad o trastorno en el que el sistema inmune
del sujeto no funciona a capacidad normal o en el que sería útil
aumentar la respuesta inmune de un sujeto, por ejemplo, para
eliminar un tumor o cáncer (por ejemplo, tumores del cerebro, pulmón
(por ejemplo, célula pequeña y célula no pequeña), ovario, pecho,
próstata, colon, así como otros carcinomas y sarcomas) o una
infección vírica (por ejemplo, HIV, herpes), fúngica (por ejemplo,
Candida sp.), bacteriana o parasitaria (por ejemplo,
Leishmania, Toxoplasma) en un sujeto.
Una "enfermedad asociada con activación del
sistema inmune" significará una enfermedad o estado causado o
exacerbado por activación del sistema inmune del sujeto. Los
ejemplos incluyen lupus sistémico eritematoso, sepsis y
enfermedades autoinmunes tales como artritis reumatoide y esclerosis
múltiple.
Un "sujeto" significará un ser humano o
animal vertebrado, incluyendo un perro, gato, caballo, vaca, cerdo,
oveja, cabra, pollo, mono, rata, ratón, etc.
En el transcurso de la investigación de los
efectos estimuladores de linfocitos de dos oligonucleótidos
antisentido específicos para secuencias retrovíricas endógenas,
usando métodos descritos en los Ejemplos 1 y 2 adjuntos, se
encontró sorprendentemente que dos de veinticuatro "testigos"
(incluyendo diversos testigos mezclados, sentido y desadaptados
para un panel de ODN "antisentido") mediaban también en la
activación de células B y secreción de IgM, mientras que los otros
"testigos" no tenían efecto.
Dos observaciones sugirieron que el mecanismo de
esta activación de células B por el ODN "testigo" puede no
implicar efectos antisentido, 1) una comparación de secuencias de
ADN de vertebrados listadas en GenBank no mostraba mayor homología
que la observada con ODN no estimulador y 2) los dos testigos no
mostraban hibridación a manchas de Northern con 10 \mug de poli
A+ARN de bazo. La resíntesis de estos ODN en un sintetizador
diferente o la purificación extensiva por electroforesis en gel de
poliacrilamida o cromatografía líquida a alta presión dieron
estimulación idéntica, eliminando la posibilidad de una impureza. Se
vio una estimulación similar usando células B de ratones C3H/HeJ,
eliminando la posibilidad de que pudiera contar en los resultados la
contaminación por lipopolisacárido (LPS).
El hecho de que dos ODN "testigo" causaran
activación de células B similar a la de los dos ODN
"antisentido" aumentó la posibilidad de que los cuatro ODN
fueran estimulantes de células B a través de algún mecanismo
no-antisentido que implicara un motivo de secuencia
que estuviera ausente en los otros ODN testigo no estimuladores.
Comparando estas secuencias, se descubrió que los cuatro ODN
estimuladores contenían dinucleótidos de ODN que estaban en un
contexto de secuencia diferente del testigo no estimulador.
Para determinar si el motivo CpG presente en el
ODN estimulador era responsable de la estimulación observada, se
sintetizaron más de 300 ODN de longitud variable de 5 a 42 bases que
contenían o no dinucleótidos CpG metilados o sin metilar en
diversos contextos de secuencia. Estos ODNs, incluyendo los dos
"testigos" originales (ODN 1 y 2) y dos sintetizados
originalmente como "antisentido" (ODN 3D y 3M); Krieg, A.M.
J. Immunol. 143:2448 (1989)), se examinaron después por los
efectos in vitro en células de bazo (se listan secuencias
representativas en la Tabla 1). Varios ODN que contenían
dinucleótidos CpG indujeron activación de células B y secreción de
IgM; la magnitud de esta estimulación podía aumentarse típicamente
añadiendo más dinucleótidos CpG (Tabla 1; compárese ODN 2 a 2a o 3D
a 3Da y 3Db). La estimulación no parecía resultar de un mecanismo
antisentido o impureza. El ODN no ocasionaba activación detectable
de \gamma\delta u otras poblaciones de células T.
Las secuencias de ODN mitogénicas se hicieron
uniformemente no estimuladoras si se mutaba el dinucleótido CpG
(Tabla 1; compárese ODN1 a 1a; 3D a 3Dc; 3M a 3Ma; y 4 a 4a) o si se
sustituía la citosina del dinucleótido CpG por
5-metilcitosina (Tabla 1; ODN 1b, 2b, 2c, 3Dd y
3Mb). Como contraste, la metilación de otras citosinas no redujo la
actividad de ODN (ODN 1c, 2d, 3De y 3Mc). Estos datos confirmaron
que un motivo CpG es el elemento esencial presente en ODN que
activa células B.
En el transcurso de estos estudios, resultó
claro que las bases que flanquean el dinucleótido CpG jugaban un
papel importante para determinar la activación de células B
inducidas por un ODN. Se determinó que el motivo estimulador óptimo
consistía en un CpG flanqueado por dos purinas 5' (preferiblemente
un dinucleótido GpA) y dos pirimidinas 3' (preferiblemente un
dinucleótido TpT o TpC). Las mutaciones de ODN para llevar el métivo
CpG más próximo a este ideal mejoraron la estimulación (por
ejemplo, compárese ODN 2 a 2e; 3M a 3Md), mientras que mutaciones
que alteraban el motivo reducían la estimulación (por ejemplo,
compárese ODN 3D a 3Df; 4 a 4b, 4c y 4d). Por otra parte,
mutaciones fuera del motivo CpG no reducían la estimulación (por
ejemplo, compárese ODN 1 a 1d; 3D a 3Dg; 3M a 3Me).
De los ensayados, los ODNs más cortos de 8 bases
eran no estimuladores (por ejemplo, ODN 4e). Entre los cuarenta y
ocho ODN de 8 bases ensayados, la secuencia más estimuladora
identificada fue TCAACGTT (ODN 4) que contiene el "palíndrome"
autocomplementario AACGTT. Para optimizar adicionalmente este
motivo, se encontró que ODN que contiene Gs en ambos extremos
mostraba una estimulación acrecentada, particularmente si el ODN se
hacía resistente a nucleasa por modificación con fosforotioato de
los enlaces internucleótidos terminales. El ODN 1585 (5'
GGGGTCAACGTTCAGGGGGG 3' (SEQ ID NO: 1)), en el que los dos primeros
y los cinco últimos enlaces internucleótidos están modificados con
fosforotioato causaron una media de aumento de 25,4 veces en
proliferación de células de bazo de ratón, en comparación con una
media de aumento de 3,2 veces en la proliferación inducida por ODN
1638, que tenía la misma secuencia que ODN 1585 excepto que los 10
Gs en los dos extremos están sustituidos por 10 As. El efecto de
los extremos ricos en G es cis; la adición a las células de
un ODN con extremos poli G pero no motivo CpG junto con 1638 no dio
proliferación aumentada.
Otro ODN octámero que contenía un palíndrome de
6 bases con un dinucleótido TpC en el extremo 5' también era activo
si estaba próximo al motivo óptimo (por ejemplo, ODN 4b, 4c). Otros
dinucleótidos en el extremo 5' dieron estimulación reducida (por
ejemplo, ODN 4f; se ensayaron los dieciséis dinucleótidos posibles).
La presencia de un dinucleótido 3' era insuficiente para compensar
la falta de un dinucleótido 5' (por ejemplo, ODN 4g). La rotura del
palíndrome eliminó la estimulación en el ODN octámero (por ejemplo,
ODN 4h), pero no se requerían palíndromes en ODN más largos.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
* \begin{minipage}[t]{128mm} Los índices de estimulación son las medias y desviaciones típicas derivadas de al menos 3 experimentos separados, y se comparan con pocillos cultivados sin ODN añadido. ND = no hecho. Los dinucleótidos CpG están subrayados. Los puntos indican identidad; Las rayas indican supresiones. Z indica 5 metil citosina).\end{minipage} |
Se investigó la cinética de activación de
linfocitos usando células de bazo de ratón. Cuando se impulsaron
las células al mismo tiempo como adición de ODN y se cosechan justo
cuatro horas más tarde, había ya un aumento de dos veces en la
incorporación de ^{3}H uridina. La estimulación alcanzó un pico a
las 12-48 horas y disminuyó después. Después de 24
horas, no se detectó ODN intacto, quizás justificando la
subsiguiente caída de estimulación cuando se cultivaron células B
con o sin anti-IgM (en una dosis submitogénica) con
CpG ODN, se encontró que aumentaban sinérgicamente las
proliferaciones aproximadamente 10 veces por los dos nitrógenos en
combinación después de 48 horas. La magnitud de la estimulación era
dependiente de la concentración y superaba constantemente la de LPS
en condiciones óptimas para ambos. Los oligonucleótidos que
contenían una cadena principal de fosforotioato resistente a
nucleasa eran aproximadamente doscientas veces más eficaces que
oligonucleótidos no modificados.
Se usó análisis del ciclo de células para
determinar la proporción de células B activadas por
CpG-ODN. El CpG-ODN indujo
ciclación en más del 95% de células B (Tabla 2). Linfocitos B
esplénicos clasificados por citometría de flujo en subpoblaciones
CD23- (zona marginal) y CD23+ (folicular) eran igualmente sensibles
a la estimulación inducida por ODN, como lo fueron poblaciones en
reposo y activadas de células B aisladas por fraccionamiento en
gradientes de Percoll. Estos estudios demuestran que
CpG-ODN induce esencialmente todas las células B
para entrar en el ciclo de células.
Porcentaje de células en | |||
Tratamiento | G0 | G1 | SA+G2+M |
Medio | 97,6 | 2,4 | 0,02 |
ODN 1a | 95,2 | 4,8 | 0,04 |
ODN 1d | 2,7 | 74,4 | 22,9 |
ODN 3Db | 3,5 | 76,4 | 20,1 |
LPS (30 \mug/ml) | 17,3 | 70,5 | 12,2 |
Los efectos mitogénicos de CpG ODN en células
humanas se ensayaron en células mononucleares de sangre periférica
(PBMCs) obtenidas de dos pacientes con leucemia linfocítica crónica
(CLL) como se describe en el Ejemplo 1. Un ODN testigo que no
contenía secuencia de dinucleótido CpG no mostró efecto en la
proliferación basal de 442 cpm y 874 cpm (proliferación medida por
incorporación de ^{3}H timidina) de las células humanas. Sin
embargo, un CpG ODN modificado con fosforotioato 3 Md (SEQ ID NO:
25) indujo proliferación aumentada de 7.210 y 86.795 cpm
respectivamente en los dos pacientes con una concentración de sólo 1
\muM. Puesto que estas células se habían congelado, pueden haber
sido menos sensibles a los oligos que células recientes in
vivo. Además, las células de pacientes con CLL son típicamente
no proliferantes, que es por lo que la quimioterapia tradicional no
es eficaz.
Ciertos linajes de células B tales como
WEHI-231 son inducidos a experimentar detención del
crecimiento y/o apoptosis en respuesta a reticulación de su
receptor antígeno por anti-IgM (Jakway, J.P. et
al., "Growth regulation of the B lymphoma cell line
WEHI-231 by anti-immunoglobulin,
lipopolysaccharide and other bacterial products" J. Immunol.
137:2225 (1986); Tsubata, T., J. Wu y T. Honjo:
"B-cell apoptosis induced by antigen receptor
crosslinking is blocked by a T-cell signal through
CD40". Nature 364:645 (1993)). Las células
WEHI-231 se rescatan de esta detención del
crecimiento por ciertos estímulos tales como LPS y por el ligando
CD40. Se encontró también que ODN que contenía el motivo CpG
protege WEHI-231 de la detención del crecimiento
inducida por anti-IgM, indicando que no se
requieren para el efecto poblaciones de células accesorias.
Para entender mejor los efectos inmunes de CpG
ODN no metilado, se midieron los niveles de citoquinas y
prostaglandinas in vitro e in vivo. A diferencia de
LPS, no se encontró que CpG ODN induzca macrófagos purificados para
producir prostaglandina PGE2. De hecho, no se detectó efecto
directo evidente de CpG ODN en macrófagos o células T. No se
detectó en las primeras seis horas, in vivo o en células de
bazo completas, un aumento significativo de las siguientes
interleuquinas: IL-2, IL-3,
IL-4 o IL-10. Sin embargo, el nivel
de IL-6 aumentó notablemente en 2 horas en el suero
de ratones inyectados con CpG ODN. Se detectó también en las
primeras dos horas una expresión aumentada de IL-12
e interferón gamma (IFN-\gamma) por células del
bazo.
Para determinar si CpG ODN puede causar
estimulación inmune in vivo, se inyectaron ratones DBA/2 una
vez intraperitonealmente con PBS o fosforotioato CpG o
no-CpG ODN con una dosis de 33 mg/kg
(aproximadamente 500 \mug/ratón). Los estudios de farmacocinética
en ratones indican que esta dosis de fosforotioato da niveles de
aproximadamente 10 \mug/g en tejido de bazo (dentro del intervalo
de concentración eficaz determinado a partir de los estudios in
vitro descritos aquí) durante más de veinticuatro horas
(Agrawal, S. et al. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA
91:7595). Se examinó en células de bazo de ratones veinticuatro
horas después de inyección de ODN la expresión de marcadores de
activación de la superficie de células B Ly6A/E,
Bla-1 y MHC clase II usando citometría de flujo de
tres colores y su proliferación espontánea usando ^{3}H timidina.
La expresión de los tres marcadores de activación aumentó
significativamente en células B de ratones inyectados con CpG ODN,
pero no de ratones inyectados con PBS u ODN no-CpG.
La incorporación espontánea de ^{3}H timidina aumentó en
2-6 veces en células de bazo de ratones inyectados
con el ODN estimulador en comparación con PBS o ratones inyectados
con ODN no-CpG. Después de 4 días, los niveles de
IgM del suero en ratones inyectados con CpG ODN in vivo
aumentaron en aproximadamente 3 veces en comparación con los
testigos. Consecuente con la incapacidad de estos agentes para
activar células T, hubo un cambio mínimo en la expresión de células
T de las IL-2R o CD-44.
La degradación de fosfodiéster ODN en suero es
mediada principalmente por exonucleasas 3', mientras que la
degradación intracelular de ODN es más compleja, implicando
exonucleasas y endonucleasas 5' y 3'. Usando un panel de ODN que
lleva la secuencia 3D con números variables de enlaces modificados
por fosforotioato en los extremos 5' y 3', se determinó
empíricamente que se requieren dos enlaces modificados 5' y cinco 3'
para proporcionar estimulación óptima con este CpG ODN.
Como se describe con mayor detalle en el Ejemplo
4, se realizaron experimentos para determinar si oligonucleótidos
que contienen CpG estimulaban la actividad de células destructoras
naturales (NK) además de células B. Como se muestra en la Tabla 3,
se observó una inducción destacada de actividad de NK entre células
del bazo cultivadas con CpG ODN 1 y 3Dd. Como contraste, no había
relativamente inducción en efectores que se habían tratado con ODN
testigo sin CpG.
% de lisis específica de YAC-1 | % de lisis específica de 2C11 | |||
Efector: | Objetivo | Efector: | Objetivo | |
ODN | 50:1 | 100:1 | 50:1 | 100,1 |
Ninguno | -1,1 | 1,4 | 15,3 | 16,6 |
1 | 16,1 | 24,5 | 38,7 | 47,2 |
3Dd | 17,1 | 27,0 | 37,0 | 40,0 |
ODN sin CpG | -1,6 | -1,7 | 14,8 | 15,4 |
Se ensayó como se describe en el Ejemplo 1 la
mitogenicidad de células B de ODN en el que las citosinas en
motivos CpG o en cualquier parte se sustituyeron por
5-metilcitosina. Como se muestra en la anterior
Tabla 1, los ODN que contenían motivos CpG metilados eran no
mitogénicos (Tabla 1; ODN 1c, 2f, 3De y 3Mc). Sin embargo, la
metilación de citosinas distintas que en un dinucleótido CpG
conservaban sus propiedades estimuladoras (Tabla 1, ODN 1d, 2d, 3Df
y 3Md).
En algunos casos, se encontró que ODN que
contienen dinucleótidos CpG que no están en el motivo estimulador
descrito antes bloquean el efecto estimulador de otros CpG ODN
mitogénicos. Específicamente, la adición de un motivo CpG atípico
consistente en un GCG cerca de o en el extremo 5' y/o 3' de CpG ODN
inhibía realmente la estimulación de proliferación por otros
motivos CpG. La metilación o sustitución de la citosina en un motivo
CpG invierte este efecto. Por sí mismo, un motivo GCG en un ODN
tiene un efecto mitogénico modesto, aunque bastante más bajo que el
que se ve con el motivo CpG preferido.
A diferencia de antígenos que provocan células B
a través de su receptor de Ig superficial, CpG no indujo ningún
flujo de Ca^{2+} detectable, cambios en la fosforilación de
proteína tirosina o generación de IP 3. La citometría de flujo con
ODN conjugado a FITC con o sin un motivo CpG se realizó como se
describe en Zhao, Q. et al. (Antisense Research and
Development 3:53-66 (1993)), y mostró una unión
a membrana, absorción celular, emanación y localización
intracelular equivalentes. Esto sugiere que puede no haber proteínas
de membrana de células específicas para CpG ODN. En lugar de actuar
a través de la membrana celular, esos datos sugieren que
oligonucleótidos que contienen CpG no metilado requieren para su
actividad absorción celular: ODN enlazado covalentemente a un
soporte sólido de Teflon era no estimulador, al igual que ODN
biotinado inmovilizado en perlas de avidina o placas petri
revestidas de avidina. CpG ODN conjugado a FITC o biotina conservaba
propiedades mitogénicas completas, indicando que no había
impedimento estérico.
El motivo CpG óptimo (TGACGTT/C) es idéntico al
CRE (elemento de respuesta de AMP cíclico). Al igual que los
efectos mitogénicos de CpG ODN, la unión de CREB al CRE se suprime
si el CpG central está metilado. Su usaron los ensayos de cambio de
movilidad electroforética para determinar si los CpG ODN, que son de
cadena sencilla, podían competir con la unión de proteínas CREB/ATF
de células B a su lugar de unión normal, el CRE de doble cadena.
Los ensayos de competición demostraron que ODN de cadena sencilla
que contenía motivos CpG podía competir completamente con la CREB a
su lugar de unión, mientras que ODN sin motivos CpG no podía. Estos
datos soportan la conclusión de que CpG ODN ejercen sus efectos
mitogénicos interactuando con una o más proteínas CREB/ATF de
células B de alguna manera. A la inversa, la presencia de secuencias
GCG u otros motivos CPG atípicos cerca de los extremos 5' y/o 3' de
ODN interactúa con proteínas CREB/ATF de una forma que no causa
activación y puede incluso impedirla.
El motivo CpG estimulador es común en ADN
genómico microbiano, pero bastante raro en ADN de vertebrados.
Además, se ha informado de que ADN bacteriano induce proliferación
de células B y producción de inmunoglobulina (Ig), mientras que el
ADN de mamífero no (Messina, J.P. et al., J. Immunol.
147:1759 (1991)). Los experimentos descritos adicionalmente en
el Ejemplo 3, en los que se encontró que la metilación de ADN
bacteriano con CpG metilasa suprime mitogenicidad, demuestran que
la diferencia del estado de CpG es la causa de la estimulación de
células B por ADN bacteriano. Este dato soporta la siguiente
conclusión: los dinucleótidos CpG no metilados presentes dentro de
ADN bacteriano son responsables de los efectos estimuladores de ADN
bacteriano.
Teleológicamente, parece probable que la
activación de linfocitos por el motivo CpG representa un mecanismo
de defensa inmune que puede distinguir por ello ADN bacteriano de
hospedante. El ADN de hospedante induciría pequeña o nula
activación de linfocitos debido a su supresión y metilación de CpG.
El ADN bacteriano causaría una activación de linfocitos selectiva
en tejidos infectados. Puesto que la trayectoria de CpG actúa
sinérgicamente con la activación de células B a través del receptor
de antígeno, las células B que llevan receptor de antígeno
específico para antígenos bacterianos recibirían una señal de
activación a través de Ig de la membrana celular y una segunda
señal de ADN bacteriano, y tenderían por tanto a activarse
preferentemente. La interrelación de esta trayectoria con otras
trayectorias de activación de células B proporciona un mecanismo
fisiológico que emplea un antígeno policlonal para inducir
respuestas específicas para el antígeno.
Para su uso en la presente invención, pueden
sintetizarse oligonucleótidos de novo usando cualquiera de un
cierto número de procedimientos muy conocidos en la técnica. Por
ejemplo, el método de \beta-cianoetil
fosforoamidita (S.L. Beaucage y M.H. Caruthers, (1981) Tet. Let.
22:1859); el método de nucleósido H-fosfonato
(Garegg et al., (1986) Tet. Let. 27:
4051-4054; Froehler et al., (1988) Nucl.
Acid. Res. 14: 5399-5407; Garegg et al.,
(1986) Tet. Let. 27: 4055-4058, Gaffney et
al., (1988) Tet. Let. 29: 2619-2622).
Estas químicas pueden realizarse mediante una variedad de
sintetizadores de oligonucleótidos automatizados disponibles en el
mercado. Alternativamente, pueden prepararse oligonucleótidos a
partir de secuencias de ácidos nucleicos existentes (por ejemplo,
genómicos o cADN) usando técnicas conocidas, tales como las que
emplean enzimas de restricción, exonucleasas o endonucleasas.
Para su uso in vivo, los oligonucleótidos
son preferiblemente resistentes relativamente a degradación (por
ejemplo, mediante endo- y exo-nucleasas). La
estabilización de oligonucleótidos puede conseguirse mediante
modificaciones de la cadena principal de fosfato. Un oligonucleótido
estabilizado preferido tiene una cadena principal modificada con
fosforotioato. La farmacocinética de ODN con fosforotioato muestra
que tienen una vida media sistémica de cuarenta y ocho horas en
roedores y sugiere que pueden ser útiles para aplicaciones in
vivo (Agrawal, S. et al. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 88:7595). Pueden sintetizarse fosforotioatos usando
técnicas automatizadas que emplean químicas de fosforamidato o H
fosfonato. Pueden fabricarse aril- y
alquil-fosfonatos, por ejemplo (como se describe en
la Patente de los EE.UU. Nº 4.469.863); y pueden prepararse
alquilfosfotriésteres (en los que el resto de oxígeno cargado se
alquila como se describe en la Patente de los EE.UU. Nº 5.023.243 y
en la Patente Europea Nº 092.574) mediante síntesis en fase sólida
automatizada usando reactivos disponibles comercialmente. Se han
descrito métodos para fabricar otras modificaciones y sustituciones
de cadena principal de ADN (Uhlmann, E. y Peyman, A. (1990) Chem.
Rev. 90:544; Goodchild, J. (1990) Bioconjugate Chem.
1:165).
Para administración in vivo, pueden
asociarse oligonucleótidos con una molécula que produzca una unión
de mayor afinidad a las superficies de una célula objetivo (por
ejemplo, una célula B y una célula destructora natural (NK)) y/o
una absorción celular aumentada por células objetivo para formar un
"complejo de entrega de oligonucleótido". Los oligonucleótidos
pueden asociarse iónica o covalentemente con moléculas apropiadas
usando métodos que son muy conocidos en la técnica. Puede usarse una
variedad de agentes de acoplamiento o reticulación, por ejemplo,
proteína A, carbodiimida y
N-succinimidil-3-(2-piridiltio)propionato
(SPDP). Alternativamente, pueden encapsularse oligonucleótidos en
liposomas o virosomas usando técnicas muy conocidas.
La presente invención se ilustra adicionalmente
mediante los siguientes Ejemplos, que no deben considerarse en modo
alguno como limitación adicional. El contenido completo de todas las
referencias (incluyendo referencias bibliográficas, patentes
otorgadas, solicitudes de patente publicadas y solicitudes de
patente en tramitación junto con la presente) citadas en toda esta
solicitud se incorporan aquí expresamente como referencia.
En base a sus propiedades inmunoestimuladoras,
pueden administrarse oligonucleótidos que contienen al menos un
dinucleótido CpG no metilado a un sujeto in vivo para tratar
una "deficiencia del sistema inmune". Alternativamente, pueden
ponerse en contacto oligonucleótidos que contienen al menos un
dinucleótido CpG no metilado con linfocitos (por ejemplo, células B
o células NK) obtenidos de un sujeto que tenga una deficiencia del
sistema inmune ex vivo, y reimplantarse después en el sujeto
linfocitos activados.
Pueden administrarse oligonucleótidos
inmunoestimuladores a un sujeto conjuntamente con la vacuna, como
coadyuvante, para estimular el sistema inmune de un sujeto para
efectuar una respuesta mejor de la vacuna, ligeramente antes o al
mismo tiempo que la vacuna.
CpG ODN aumentó también la actividad de células
destructoras naturales en células humanas y de ratón. La inducción
de la actividad de NK puede igualmente ser beneficiosa en
inmunoterapia de cáncer.
Para su uso en terapia, una cantidad eficaz de
un oligonucleótido apropiado solo o formulado como un complejo de
entrega de oligonucleótido puede administrarse a un sujeto por
cualquier modo que permita al oligonucleótido ser absorbido por las
células objetivo apropiadas (por ejemplo, células B y células NK).
Las vías preferidas de administración incluyen oral y transdérmica
(por ejemplo, mediante un parche). Los ejemplos de otras vías de
administración incluyen inyección (subcutánea, intravenosa,
parenteral, intraperitoneal, intratecal, etc.). La inyección puede
ser en un bolus o una infusión continua.
Un oligonucleótido solo o como un complejo de
entrega de oligonucleótido puede administrarse conjuntamente con un
excipiente aceptable farmacéuticamente. Según se usa aquí, la frase
"excipiente aceptable farmacéuticamente" se pretende que
incluya sustancias que pueden coadministrarse con un oligonucleótido
o un complejo de entrega de oligonucleótido y permita al
oligonucleótido realizar su función pretendida. Los ejemplos de
tales excipientes incluyen soluciones, disolventes, medios de
dispersión, agentes de retardo, emulsiones y similares. El uso de
tales medios para sustancias activas farmacéuticamente es muy
conocido en la técnica. Cualquier otro excipiente convencional
adecuado para su uso con el oligonucleótido está dentro del alcance
de la presente invención.
La expresión "cantidad eficaz" de un
oligonucleótido se refiere a la cantidad necesaria o suficiente para
realizar un efecto biológico deseado. Por ejemplo, una cantidad
eficaz de un oligonucleótido que contenga al menos un CpG no
metilado para tratar una deficiencia del sistema inmune podría ser
la cantidad necesaria para eliminar un tumor, cáncer o infección
bacteriana, vírica o fúngica. Una cantidad eficaz para uso como
coadyuvante de vacuna podría ser la cantidad útil para aumentar la
respuesta inmune de un sujeto a una vacuna. La cantidad eficaz para
cualquier aplicación particular puede variar dependiendo de factores
tales como como la enfermedad o estado a tratar, el oligonucleótido
particular administrado, el tamaño del sujeto o la gravedad de la
enfermedad o estado. Un experto ordinario en la técnica puede
determinar empíricamente la cantidad eficaz de un oligonucleótido
particular sin necesitar una experimentación indebida.
Los estudios señalados antes indican que
oligonucleótidos que contienen CpG no metilado son directamente
mitogénicos para linfocitos (por ejemplo, células B y células NK).
Junto con la presencia de estas secuencias en ADN bacteriano, estos
resultados sugieren que la infrarrepresentación de dinucleótidos CpG
en genomas de animales, y la metilación extensiva de citosinas
presentes en tales dinucleótidos, pueden explicarse por la
existencia de un mecanismo de defensa inmune que puede distinguir
ADN bacteriano del de hospedante. El ADN del hospedante estaría
presente comúnmente en muchas regiones anatómicas y áreas de
inflamación debido a apoptosis (muerte de células), pero
generalmente induce poca o nula activación de linfocitos. Sin
embargo, la presencia de ADN bacteriano que contenga motivos CpG no
metilados puede causar activación de linfocitos precisamente en
regiones anatómicas infectadas, donde sea beneficioso. Esta nueva
trayectoria de activación proporciona una alternativa rápida a
activación de células B específica para antígeno dependiente de
células T. Sin embargo, es probable que la activación de células B
no fuera totalmente no específica. Las células B que llevan
receptores de antígeno específicos para productos bacterianos
podrían recibir una señal de activación a través de Ig de la
membrana celular, y una segunda de ADN bacteriano, impulsando por
ello más vigorosamente respuestas inmunes específicas para el
antígeno.
En base a su interacción con CREB/ATF, los
oligonucleótidos que contienen secuencias de trinucleótidos GCG en
o cerca de ambos términos tienen actividad antivírica, independiente
de cualquier efecto antisentido debido a complementariedad entre el
oligonucleótido y la secuencia vírica fijada como objetivo. En base
a esta actividad, una cantidad eficaz de oligonucleótidos
inhibidores puede administrarse a un sujeto para tratar o prevenir
una infección vírica.
Se purificaron células B de bazos obtenidos de
ratones DBA/2 o BXSB exentos de patógenos específicos de
6-12 semanas de edad (criados en la instalación de
cuidado de animales de la Universidad de Iowa; no se notaron
diferencias de raza sustanciales) que se agotaron de células T con
anti-Thy-1.2 y complemento y
centrifugación sobre linfolito M (Cedarlane Laboratories, Hornby,
Ontario, Canadá) ("células B"). Las células B contenían menos
del 1% de células CD4^{+} o CD8^{+}. Se repartieron 8 x 10^{4}
células B por triplicado en placas de microtitulación de 96
pocillos en 100 \mul de RPMI que contenía 10% de FBS (inactivado
por calor a 65ºC durante 30 min), 2-mercaptoetanol
50 \muM, 100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina y
L-glutamato 2 mM. Se añadió ODN 20 \muM al
comienzo del cultivo durante 20 h a 37ºC, se impulsaron las células
con 1 \muCi de ^{3}H uridina y se cosecharon y contaron 4 h más
tarde. Se enumeraron células B secretoras de Ig usando el ensayo de
manchas ELISA después de cultivar células de bazo completas con ODN
a 20 \muM durante 48 h. Los datos, indicados en la Tabla 1,
representan el índice de estimulación comparado con células
cultivadas sin ODN. Las células cultivadas sin ODN dieron 687 cpm,
mientras que las células cultivadas con 20 \mug/ml de LPS
(determinado por titulación ser la concentración óptima) dieron
99.699 cpm en este experimento. Los ensayos de incorporación de
^{3}H timidina dieron resultados similares, pero con alguna
inhibición no específica por timidina liberada de ODN degradado
(Matson S. y A.M. Krieg (1992) Nonspecific suppression of
^{3}H-thymidine incorporation by control
oligonucleotides. Antisense Research and Development
2:325).
Para análisis de ciclo de células, se cultivaron
2 x 10^{6} células B durante 48 h en 2 ml de medio de cultivo de
tejidos solo, o con 30 \mug/ml de LPS o con el ODN modificado con
fosforotioato indicado a 1 \muM. El análisis del ciclo de células
se realizó como se describe en (Darzynkiewicz, Z. et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78:2881 (1981)).
Para ensayar los efectos mitogénicos de CpG ODN
en células humanas, se obtuvieron células monocitos de sangre
periférica (PBMCs) de dos pacientes con leucemia linfocítica crónica
(CLL), una enfermedad en la que las células circulantes son células
B malignas. Se cultivaron las células durante 48 h y impulsaron
durante 4 horas con timidina tritiada como se ha descrito
antes.
Se trataron suspensiones de células simples de
los bazos de ratones recién sacrificados con
anti-Thyl, anti-CD4 y
anti-CD8 y complemento por el método de Leibson
et al., J. Exp. Med. 154:1681 (1981)). Las células B
restantes (< 0,02% de contaminación de células T) se aislaron de
la banda del 63-70% de un gradiente de Percoll
discontinuo por el procedimiento de DeFranco et al., J.
Exp. Med. 155:1523 (1982). Éstas se cultivaron como se ha
descrito antes en ODN 30 \muM o 20 \mug/ml de LPS durante 48 h.
El número de células B que segregaban activamente IgM fue máximo en
este momento, como se determinó por ensayo de ELImanchas (Klinman,
D.M. et al., J. Immunol. 144:506 (1990)). En ese
ensayo, se incubaron células B durante 6 h en placas de
microtitulación revestidas de anti-Ig. La Ig que
produjeron (> 99% de IgM) se detectó usando
anti-Ig marcada con fosfatasa (Southern
Biotechnology Associated, Birmingham, AL). Los anticuerpos
producidos por células B individuales se visualizaron por adición
de BCIP (Sigma Chemical Co., St. Louis MO) que forma un precipitado
azul insoluble en presencia de fosfatasa. Se usó la dilución de
células que producen 20-40 manchas/pocillo para
determinar el número total de células B secretoras de
anticuerpos/muestra. Todos los ensayos se realizaron por triplicado.
En algunos experimentos, se ensayó IgM por ELISA en sobrenadantes
de cultivo, y mostraron aumentos similares en respuesta a
CpG-ODN.
Se cultivaron células de DBA/2 B sin ADN o con
50 \mug/ml de a) Micrococcus lysodeikticus; b) bazo de
ratones NZB/N; y c) ADNs genómicos de bazo de ratones NFS/N durante
48 h, y se impulsaron después con ^{3}H timidina durante 4 horas
antes de cosechar células. Se digirieron muestras de ADN duplicadas
con DNAsa I durante 30 minutos a 37ºC antes de añadirse a cultivos
de células. ADN de E. coli indujo también un aumento de 8,8
veces en el número de células B secretoras de IgM en 48 horas
usando el ensayo de manchas de ELISA.
Se cultivaron células DBA/2 sin aditivo, con 50
\mug/ml de LPS o el ODN 1; 1a; 4 o 4a a razón de 20 \muM. Se
cultivaron células y se cosecharon a las 4, 8, 24 y 48 horas. Se
cultivaron células BXSB como en el Ejemplo 1 con 5, 10, 20, 40 u 80
\muM de ODN 1; 1a; 4 o 4a o LPS. En este experimento, pocillos sin
ODN tenían 3833 cpm. Cada experimento se realizó al menos tres
veces con resultados similares. Las desviaciones típicas de los
pocillos triplicados fueron < 5%.
Se cultivaron 10 x 10^{6} células de bazo
C57BL/6 en dos ml de RPMI (suplementado como se ha descrito para el
Ejemplo 1) con o sin CpG 40 \muM o sin CpG ODN durante cuarenta y
ocho horas. Se lavaron células y se usaron después como células
efectoras en un ensayo de liberación de ^{51}Cr a corto plazo con
YAC-1 y 2C11, dos linajes celulares objetivo
sensibles a NK (Ballas, Z.K. et al. (1993) J. Immunol.
150:17). Se añadieron células efectoras en diversas concentraciones
a 10^{4} células objetivo marcadas con ^{51}Cr en placas de
microtitulación de fondo en V en 0,2 ml, y se incubaron en 5% de
CO_{2} durante 4 h a 37ºC. Se centrifugaron después las placas y
se contó la radioactividad de una parte alícuota del sobrenadante.
El porcentaje de lisis específica se determinó calculando la
relación del ^{51}Cr liberado en presencia de células efectoras
menos el ^{51}Cr liberado cuando se cultivan solas las células
objetivo, sobre las cuentas totales liberadas después de la lisis
de células en ácido acético al 2% menos las cpm de ^{51}Cr
liberadas cuando las células se cultivan solas.
Se pesaron e inyectaron ratones IP con 0,25 ml
de PBS estéril o el fosforotioato ODN indicado disuelto en PBS.
Veinticuatro horas más tarde, se cosecharon células de bazo, lavaron
y colorearon para citometría de flujo usando 6B2 conjugado a
ficoeritrina para entrada en células B conjuntamente con anti
Ly-6A/E o anti-Iad (Pharmingen, San
Diego, CA) o anti.Bla-1 (Hardy, R.R. et al.,
J. Exp. Med. 159:1169 (1984)) conjugado a biotina. Se
estudiaron dos ratones para cada condición y se analizaron
individualmente.
Se cultivaron células B con fosforotioato ODN
con la secuencia de ODN 1a testigo o el CpG ODN 1d y 3Db y se
impulsaron después de 20 h con ^{3}H uridina o después de 44 h con
^{3}H timidina antes de cosechar y determinar las cpm.
Se cultivaron células WEHI-231
(5 x 10^{4}/pocillo) durante 1 h a 37ºC en presencia o ausencia de
LPS o el ODN testigo 1a o el CpG ODN 1d y 3D antes de añadir
anti-IgM (1 \mug/ml). Se cultivaron células
durante 20 h o más antes de un impulso de 4 h con 2 \muCi/pocillo
de ^{3}H timidina. En este experimento, células sin ODN o con
anti-IgM dieron 90,4 x 10^{3} mediante adición de
anti-IgM. El fosforodiéster ODN mostrado en la
Tabla I dio protección similar, aunque con alguna supresión no
específica debida a degradación de ODN. Cada experimento se repitió
al menos 3 veces con resultados similares.
Se inyectaron IP ratones hembras DBA/2 (2 meses
de edad) con 500 \mug de CpG o fosforotioato ODN testigo. En
diversos momentos después de la inyección, se sangraron los ratones.
Se estudiaron dos ratones para cada momento. Se midió
IL-6 por ELISA, y se calculó la concentración de
IL-6 por comparación con una curva estándar generada
usando IL-6 recombinante. La sensibilidad del
ensayo fue 10 pg/ml. Eran indetectables niveles después de 8 h.
Extractos de células completas de células
CH12.LX B mostraron 2 bandas retardadas cuando se analizaron por
EMSA con la sonda de CRE (la sonda libre está fuera de la parte
inferior de la figura). La(s) proteína(s) de CREB/ATF
que se une(n) al CRE se hizo (hicieron) competir por la
cantidad indicada de CRE frío, y por CpG ODN de cadena sencilla,
pero no por no-CpG ODN.
Los expertos en la técnica reconocerán, o serán
capaces de determinar usando sólo experimentación rutinaria, muchos
equivalentes de las realizaciones específicas de la invención
descrita aquí. Tales equivalentes se pretende que estén abarcados
por las siguientes reivindicaciones.
(1) INFORMACIÓN GENERAL
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE: Arthur M. Krieg, M.D.
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: OLIGONUCLEÓTIDOS INMUNOMODULADORES
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 27
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- DIRECCIÓN DE CORRESPONDENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESTINATARIO: LAHIVE & COCKFIELD
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: 60 STATE STREET, SUITE 510
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: BOSTON
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ESTADO: MASSACHUSETTS
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: EE:UU:
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- ZIP: 02109-1875
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- FORMA LEGIBLE EN ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: Disquete
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: IBM PC compatible
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: texto ASCII
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- DATOS DE SOLICITUD ACTUALES:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NÚMERO DE SOLICITUD: US
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- FECHA DE PRESENTACIÓN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CLASIFICACIÓN:
\vskip0.800000\baselineskip
- (viii)
- INFORMACIÓN DE APODERADO/AGENTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: ARNOLD, BETH E.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- NÚMERO DE REGISTRO: 35.430
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- NÚMERO DE REFERENCIA/EXPEDIENTE: UIZ-013CP
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- INFORMACIÓN DE TELECOMUNICACIÓN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TELÉFONO: (617)227-7400
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TELEFAX: (617)227-5941
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGGGTCAACG TTCAGGGGGG
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTAGACGTT AGCGT
\hfill15
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTAGATGTT AGCGT
\hfill15
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 7
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTAGANGTT AGCGT
\hfill15
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:5:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 13
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:5:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTAGACGTT AGNGT
\hfill15
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:6:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:6:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCATGACGTT GAGCT
\hfill15
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:7:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:7:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATGGAAGGTC CAGCGTTCTC
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:8:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:8:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATCGACTCTC GAGCGTTCTC
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:9:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 3
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 10
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 14
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:9:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATNGACTCTN GAGNGTTCTC
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:10:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 3
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:10:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATNGACTCTC GAGCGTTCTC
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:11:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATCGACTCTC GAGCGTTNTC
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:12:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:12:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATGGAAGGTC CAACGTTCTC
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:13:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:13:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGAACGCTG GACCTTCCAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:14:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:14:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGAACGCTC GACCTTCCAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:15:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:15:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGAACGCTC GACCTTCGAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:16:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:16:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGCAAGCTG GACCTTCCAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:17:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 6
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:17:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipQAOAANGCTG GACCTTCCAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:18:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 14
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:18:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGAACGCTG GACNTTCCAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:19:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:19:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGAACGATG GACCTTCCAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:20:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:20:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGAACGCTC CAGCACTGAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:21:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:21:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCCATGTCGG TCCTGATGCT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:22:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:22:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCCATGCTGG TCCTGATGCT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:23:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 8
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:23:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCCATGTNGG TCCTGATGCT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:24:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- ASPECTO:
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- NOMBRE/CLAVE: aspecto misc_
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- LOCALIZACIÓN: 12
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: "N indica 5 metil citosina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:24:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCCATGTCGG TNCTGATGCT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:25:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:25:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCCATGACGT TCCTGATGCT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:26:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:26:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCCATGTCGG TCCTGCTGAT
\hfill20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:27:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CARÁCTER DE LA CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO:27:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGGGTCAAGT CTGAGGGGGG
\hfill20
Claims (35)
1. Una composición, de uso como medicamento, que
comprende una vacuna y un oligonucleótido inmunoestimulador
sintético de al menos 8 bases de tamaño, que contiene al menos un
dinucleótido CpG no metilado y es un coadyuvante para la
vacuna.
2. Una composición según la reivindicación 1ª,
en la que el oligonucleótido inmunoestimulador incluye no más de
100 nucleótidos.
3. Una composición según las reivindicaciones 1ª
o 2ª, en la que el oligonucleótido inmunoestimulador es un
fosfodiéster.
4. Una composición según las reivindicaciones 1ª
o 2ª, en la que el oligonucleótido inmunoestimulador está
estabilizado.
5. Una composición según la reivindicación 4ª,
en la que el oligonucleótido inmunoestimulador tiene una
modificación de la cadena principal de fosfato.
6. Una composición según la reivindicación 5ª,
en la que la modificación es una modificación de la cadena
principal de fosforotioato.
7. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-6ª, en la que el oligonucleótido
inmunoestimulador está en el intervalo de 8-40
bases de tamaño.
8. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-7ª, en la que el oligonucleótido
inmunoestimulador no contiene un palíndrome de seis bases.
9. Una composición según la reivindicación 8ª,
en la que el oligonucleótido inmunoestimulador incluye más de 8
nucleótidos.
10. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-9ª, en la que el oligonucleótido
inmunoestimulador tiene un efecto mitogénico en linfocitos de
vertebrados.
11. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-10ª, en la que el oligonucleótido
inmunoestimulador contiene una secuencia representada por la
siguiente fórmula:
5' \
X_{1}X_{2}CGX_{3}X_{4} \
3'
en la que C y G son no metilados y
X_{1}, X_{2}, X_{3} y X_{4} son nucleótidos y no está
presente una secuencia de trinucleótido G C G en los términos 5' y
3'.
12. Una composición según la reivindicación 11ª,
en la que X_{1}, X_{2} es un dinucleótido GpA.
13. Una composición según las reivindicaciones
11ª o 12ª, en la que X_{3}, X_{4} es un dinucleótido TpC o
TpT.
14. Una composición según las reivindicaciones
11ª, 12ª o 13ª, en la que la secuencia está representada por la
siguiente fórmula:
5' \
TX_{1}X_{2}CGX_{3}X_{4} \
3'
en la que C y G son no metilados y
X_{1}, X_{2}, X_{3} y X_{4} son
nucleótidos.
15. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-14ª, en la que el oligonucleótido
inmunoestimulador está en forma de un complejo de entrega de
oligonucleótido.
16. Una composición según la reivindicación 15ª,
en la que el oligonucleótido inmunoestimulador está asociado con un
esterol, un lípido o un agente de unión específico para una célula
objetivo.
17. Una composición según la reivindicación 16ª,
en la que el oligonucleótido inmunoestimulador está asociado con
colesterol, un lípido catiónico, un virosoma, un liposoma o un
ligando reconocido por un receptor específico de la célula
objetivo.
18. Una composición según la reivindicación 16ª,
en la que el agente de unión específico para una célula objetivo es
específico para una célula B.
\newpage
19. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-18ª, en la que el oligonucleótido
inmunoestimulador incluye una pluralidad de dinucleótidos CpG no
metilados.
20. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-19ª, que comprende además un excipiente
aceptable farmacéuticamente.
21. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, de uso para tratar:
- (a)
- un sujeto humano; o
- (b)
- un animal vertebrado no humano, opcionalmente un perro, gato, caballo, vaca, cerdo, oveja, cabra, pollo, mono, rata o ratón.
22. Una composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 1ª-21ª, para tratar, prevenir o mejorar una
enfermedad o trastorno en el que el sistema inmune de un sujeto no
está funcionando normalmente, o en el que sería útil aumentar la
respuesta inmune de un sujeto.
23. Una composición según la reivindicación 22ª,
en la que dicha enfermedad o trastorno es un tumor o cáncer, o una
infección vírica, fúngica, bacteriana o parásita.
24. El uso de una composición según una
cualquiera de las reivindicaciones 1ª-20ª, para la fabricación de
un medicamento para vacunar a un sujeto.
25. El uso de un oligonucleótido
inmunoestimulador sintético de al menos 8 bases de tamaño, que
contiene al menos un dinucleótido CpG no metilado, para la
fabricación de un medicamento para administrar a un sujeto
conjuntamente con una vacuna, como coadyuvante para la vacuna.
26. Un uso según la reivindicación 25ª, en el
que el oligonucleótido inmunoestimulador es un oligonucleótido
inmunoestimulador como se ha definido en una cualquiera de las
reivindicaciones 2ª-19ª.
27. Un uso según las reivindicaciones 25ª o 26ª,
en el que dicho oligonucleótido inmunoestimulador y dicha vacuna
son de uso en un método para tratar, prevenir o mejorar una
enfermedad o trastorno en el que el sistema inmune de un sujeto no
está funcionando normalmente, o en el que sería útil aumentar la
respuesta inmune de un sujeto.
28. Un uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 24ª-27ª, en el que el medicamento aumenta una
respuesta inmune a un tumor o un cáncer, o una infección vírica,
fúngica, bacteriana o parásita.
29. El uso de una composición según una
cualquiera de las reivindicaciones 1ª-20ª, para la fabricación de
un medicamento de uso en un método para tratar, prevenir o mejorar
una enfermedad o trastorno en el que el sistema inmune de un sujeto
no está funcionando normalmente, o en el que sería útil aumentar la
respuesta inmune de un sujeto.
30. Un uso según las reivindicaciones 27ª o 29ª,
en el que dicha enfermedad o trastorno es un tumor o cáncer, o una
infección vírica, fúngica, bacteriana o parásita.
31. Un uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 24ª-30ª, en el que el medicamento es para activar
las células B de un sujeto.
32. Un uso según las reivindicaciones 24ª o 25ª,
en el que el medicamento es de uso para tratar, prevenir o mejorar
leucemia.
33. Un uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 24ª-32ª, en el que la composición se formula para
administración oral, transdérmica, subcutánea, intravenosa,
parenteral, intraperitoneal o intratecal.
34. El uso de composición según una cualquiera
de las reivindicaciones 1ª-20ª, para la fabricación de un
medicamento para tratar:
(a) un sujeto humano; o
(b) un animal vertebrado no humano,
opcionalmente un perro, gato, caballo, vaca, cerdo, oveja, cabra,
pollo, mono, rata o ratón.
35. Un uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 24ª-33ª, en el que el medicamento es para
tratar:
(a) un sujeto humano; o
(b) un animal vertebrado no humano,
opcionalmente un perro, gato, caballo, vaca, cerdo, oveja, cabra,
pollo, mono, rata o ratón.
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