MXPA02007321A - Produccion mejorada de lipidos que contienen acidos grasos polienoicos por cultivos de alta densidad de microbios eucarioticos en fermentadores. - Google Patents

Produccion mejorada de lipidos que contienen acidos grasos polienoicos por cultivos de alta densidad de microbios eucarioticos en fermentadores.

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Abstract

La presente invencion proporciona un proceso para desarrollar microorganismos eucarioticos, que son capaces de producir lipidos, en particular, lipidos que contienen acidos grasos polienoicos. La presente invencion tambien proporciona un proceso para producir lipidos microbiales eucarioticos.

Description

PRODUCCIÓN MEJORADA DE LIPIDOS QUE CONTIENEN ÁCIDOS GRASOS POLIENÓICOS POR CULTIVOS DE ALTA DENSIDAD DE MICROBIOS EUCARIÓTICOS EN FERMENTADORES CAMPO DE LA INVENCIÓN La presente invención se dirige a un nuevo proceso para desarrollar microorganismo y recuperar lípidos microbiales. En particular, la presente invención se dirige a la producción de lípidos poli no saturados microbiales.
ANTECEDENTES DE LA INVENCIÓN Generalmente se ha creído que la producción de ácidos grasos polienóicos (ácidos grasos que contienen 2 o más enlaces de carbono- carbono no saturados) en microorganismos eucarióticos requiere la presencia de oxígeno molecular (es decir, condiciones aeróbicas). Esto se debe a que se cree que el enlace doble cis formado en los ácidos grasos de todos los microorganismo eucarióticos no parásitos incluye una reacción de desaturación dependiente de oxígeno directa (sistemas de desaturasa microbial oxidativa). Otros lípidos microbiales eucarióticos que se sabe que requieren oxígeno molecular incluyen esteróles vegetales y fúngicos , oxicarotenoides (es decir, xantofilos), ubiquinonas, y compuestos hechos de cualquiera de estos lípidos (es decir, metabolitos secundarios) . Ciertos microbios eucarióticos (tales como algas; hongos, incluyendo levadura; y protistos) han demostrado ser buenos productores de ácidos grasos polienóicos en termentadores. Sin embargo, la cultivación de alta densidad (mayor a aproximadamente 100 g/L de biomasa microbial, especialmente a escala comercial) puede conducir a contenidos de ácido graso polienóico reducidos y por lo tanto productividad de ácido graso polienóico reducida. Esto puede deberse en parte a varios factores que incluyen la dificultad de mantener niveles de oxígeno disuelto elevados debido a la alta demanda de oxígeno desarrollada por la alta concentración de microbios en el caldo de fermentación. Los métodos para mantener un nivel de oxígeno disuelto más elevado incluyen incrementar la velocidad de aeración y/o utilizar oxígeno puro en lugar de aire para aeración y/o incrementar la velocidad de agitación en el fermentador. Estas soluciones generalmente incrementan el costo de la producción de lípido y costo de capital del equipo de fermentación, y puede causar problemas adicionales. Por ejemplo, la aeración incrementada puede conducir fácilmente a problemas severos de espumación en el fermentador a densidades celulares elevadas y el mezclado incrementado puede conducir al rompimiento celular microbial debido a las fuerzas cortantes incrementadas en el caldo de fermentación (esto causa que los lípidos se liberen en el caldo de fermentación en donde pueden oxidarse y/o degradarse por las enzimas). El rompimiento celular microbial es un problema incrementado en células que experimentan eliminación o limitación de nitrógeno para inducir la formación de lípido, resultando en paredes celulares más débiles. Como un resultado, cuando los microbios eucarióticos que producen lípido se desarrollan en concentraciones celulares muy elevadas, sus lípidos generalmente contienen solamente cantidades muy pequeñas de ácidos grasos polienóicos. Por ejemplo, la levadura Lipomyces starkeyi se ha desarrollado a una densidad de 153 g/L con concentración de lípido resultante de 83 g/L en 140 horas utilizando alcohol como una fuente de carbono. Todavía el contenido de ácido graso polienóico de la levadura en concentración mayor a 100 g/L promedió solamente 4.2% de los ácidos grasos totales (cayendo desde una elevación de 1 1 .5& de ácido graso total a una densidad celular de 20-30 g/L) . Yamauchi et al., J. Ferment. Technol., 1983, 61 , 275-280. Esto resulta en una concentración de ácido graso polienóico de solamente aproximadamente 3.5 g/L y una productividad de ácido graso polienóico promedio de solamente aproximadamente 0.025 g/L/hr. Adicionalmente, el único ácido graso polienóico reportado en los lípidos de levadura fue C18:2. Otra levadura, Rhodotorula glutinus, ha demostrado tener una productividad de lípido promedio de aproximadamente 0.49 g/L/hr, pero también un bajo contenido de ácido graso polienóico total en sus lípidos (15.8% en ácidos grasos totales, 14.7% C18:2 y 1 .2% C18:3) resultando en una productividad de ácido graso polienóico en cultivo alimentado en grupos de solamente aproximadamente 0.047 g/L/hr y 0.077 g/L/hr en cultivo continuo. Uno de los presentes inventores ha demostrado previamente que ciertas microalgas marinas en el orden Thraustochytriales pueden ser excelentes productores de ácidos grasos polienóicos en termentadores, especialmente cuando se desarrollan en bajos niveles de salinidad y especialmente en muy bajos niveles de cloruro. Otros han descrito que Thraustochytriads muestra una productividad de ácido graso polienóico promedio (DHA, C22:6n-3; y DPA, C22:5n-6) de aproximadamente 0.1 58 g/L/hrm cuando crecen a densidad celular de 59 g/L en 120 horas. Sin embargo, esta productividad solamente se logra en una salinidad de aproximadamente 50% de agua de mar, una concentración que causaría seria corrosión en termentadores de acero inoxidable convencionales. Los costos para producir lípidos microbiales que contienen ácidos grasos polienóicos, y especialmente los ácidos grasos altamente no saturados, tales como C18:4n-3, C20:4n-6, C20:5n-3, C22:5n-3, C22:5n-6 y C22:6n-3, han permanecido altos en parte debido a las densidades limitadas a las cuales el ácido graso polienóico elevado se ha desarrollado y la disponibilidad de oxígeno limitado tanto en estas concentraciones celulares elevadas como las temperaturas más elevadas necesarias para lograr productividad elevada. Por lo tanto, existe una necesidad de un proceso para desarrollar microorganismos en concentración elevada, el cual aún facilite la producción incrementada de lípidos que contienen ácidos grasos polienóicos.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LA INVENCIÓN La presente invención proporciona un proceso para desarrollar microorganismos eucariótico que son capaces de producir al menos aproximadamente 20% de su biomasa como lípidos y un método para producir los lípidos. Preferentemente, los lípidos contienen uno o más ácidos grasos polienóicos. El proceso comprende agregar a un medio de fermentación que comprende microorganismos eucarióticos una fuente de carbono, preferentemente una fuente de carbono sin alcohol, y una fuente nutriente limitante. Preferentemente, la fuente de carbono y la fuente nutriente limitante se agregan a una velocidad suficiente para incrementar la densidad de la biomasa del medio de fermentación a al menos aproximadamente 100 g/L. En otro aspecto de la presente invención, la condición de fermentación comprende una densidad de la biomasa que incrementa la etapa y una etapa de producción de lípido, en donde la etapa que incrementa la densidad de la biomasa comprende agregar la fuente de carbono y la fuente de nutriente limitante, y la etapa de producción de lípido comprende agregar la fuente de carbono sin agregar la fuente de nutriente limitante para crear condiciones que inducen la producción de lípido. En otro aspecto de la presente invención, la cantidad de oxígeno disuelto presente en el medio de fermentación durante la etapa de producción de líquido es inferior a la cantidad de oxígeno disuelto presente en el medio de fermentación durante la etapa que incrementa la densidad de la biomasa. En todavía otro aspecto de la presente invención, los microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levaduras), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, en donde los microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos u otros lípidos que se ha creído generalmente que requieren oxígeno molecular para sus síntesis. Particularmente, los ? ¡? Má t microorganismos útiles de la presente invención son microorganismos eucarióticos que son capaces de producir lípidos en un nivel de oxígeno del medio de fermentación de aproximadamente menos del 3% de saturación . 5 En todavía otro aspecto de la presente invención, los microorganismos se desarrollan en un proceso alimentado por grupos. Todavía otro aspecto de la presente invención proporciona mantener un nivel de oxígeno de menos de aproximadamente 3% de saturación en el medio de fermentación durante la segunda mitad del 10 proceso de fermentación. Otra modalidad de la presente invención proporciona un proceso para producir lípidos microbiales eucarióticos que comprende: (a) desarrollar microorganismos eucarióticos en un medio de fermentación para incrementar la densidad de la biomasa de dicho medio 15 de fermentación a al menos aproximadamente 100 g/L; (b) proporcionar condiciones de fermentación suficientes para permitir que dichos microorganismos produzcan dichos lípidos; y (c) recuperar dichos lípidos. en donde más de aproximadamente 15% de dichos lípidos son lípidos poli 20 no saturados. Otro aspecto de la presente invención proporciona un proceso de recuperación de lípido que comprende: (d) remover agua de dicho medio de fermentación para proporcionar microorganismos secos; y 25 (e) aislar dichos lípidos de dichos microorganismos seco. .r****,.M,^^*i^^**, uaaÉMfeHkiO iíu " - - — » - * ' — *-•» Preferentemente, la etapa de retiro de agua comprenden contactar el medio de fermentación directamente en un secador de tambos sin centrifugación anterior. Otro aspecto de la presente invención proporciona un proceso de recuperación de lípido que comprende: (d) tratar el caldo de fermentación para permeabilizar, lisas o romper las células microbiales; y (e) recuperar los lípidos del caldo de fermentación por separación de gravedad, y preferentemente centrifugación, con o sin la ayuda de un solvente soluble en agua para ayudar a romper la emulsión de iípido/agua. Preferentemente, las células microbiales se tratan en la etapa (c) en un fermentador o un envase similar. En un aspecto adicional de la presente invención, se proporciona un método para enriquecer el contenido de ácido graso polienóico de un microorganismo. El método incluye fermentar los microorganismos en un medio de crecimiento que tiene un nivel de oxígeno disuelto de menos de 10%. Un aspecto adicional de la invención es un proceso heterotrófico para producir productos y microorganismos. El proceso incluye cultivar los microorganismos que contienen genes de sintasa de poliquetido en un medio de crecimiento y mantener el nivel de oxígeno disuelto en el cultivo en menos de aproximadamente 10 por ciento.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LOS DIBUJOS ^u ? mm¡ ^ ? La Figura 1 es una tabla y un diagrama de varios parámetros de producción de lípido de un microorganismo contra la cantidad de oxígeno disuelto en un medio de fermentación .
DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LA INVENCIÓN La presente invención proporciona un proceso para desarrollar microorganismos, tales como, por ejemplo, algas, hongos (incluyendo levadura), protistos y bacterias. Preferentemente, los microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, protistos y mezclas de los mismos. Más preferentemente, los microorganismos son algas. Además, el proceso de la presente invención puede utilizarse para producir una variedad de compuestos de lípido, en particular lípidos no saturados, preferentemente lípidos poli no saturados (es decir, lípidos que contienen al menos 2 enlaces de carbono-carbono no saturados, por ejemplo, enlaces dobles), y más preferentemente lípidos altamente saturados (es decir, lípidos que contienen 4 o más enlaces de carbono-carbono no saturados) tales como ácidos grasos poli no saturados omega-3 y/u omega-6, incluyendo ácido docosahexaenóico (es decir, DHA); y otros compuestos no saturados que ocurren de manera natural, poli no saturados y altamente no saturados. Como se utiliza en la presente, el término "lípido" incluye fosfolípidos; ácidos grasos libres; esteres de ácidos grasos; triacilgliceroles; esteróles y esteres de esteróles; carotenoides; xantofilos (por ejemplo, oxicarotenoides); hidrocarburos; compuestos derivados de isoprenoide y otros lípidos conocidos por alguien de experiencia ordinaria en la materia . , » , Jt|- rn?tfttrmmrt — Más particularmente, los procesos de la presente invención son útiles para producir ácidos grasos polienóicos microbiales, eucarióticos, carotenoides, esteróles fúngicos, fitosteroles, xantofilos, ubiquinonas, y otros compuestos derivados de isoprenoide que generalmente se ha creído que requieren oxígeno para producir enlaces de carbono-carbono no saturados (es decir, condiciones aeróbicas) , y metabolitos secundarios de los mismos, específicamente, los procesos de la presente invención son útiles para desarrollar microorganismos que producen ácido(s) graso(s) polienóico(s), y para producir ácido(s) graso(s) polienóico(s). Aunque el proceso de la presente invención puede utilizarse para desarrollar una amplia variedad de microorganismos y para obtener compuestos que contienen lípido poli no saturado producidos por el mismos, por motivo de claridad, conveniencia e ilustración , esta descripción detallada de la invención tratará procesos para desarrollar microorganismos que son capaces de producir lípidos que comprende ácidos grasos poli no saturados omega-3 y/u omega-6, en particular microorganismos que son capaces de producir DHA (o cercanamente compuestos relacionados tales como DPA, EPA o ARA) . Los microorganismos incluyen microalgas, hongos (incluyendo levadura), protistos y bacterias. Un grupo de microorganismos preferidos son los miembros del grupo microbial llamado Stramenopiles que incluye microalgas y microorganismos similares a algas. Stramenopiles incluyen los siguientes grupos de microorganismos: Hamatores, Proteromonads, Opalines, Developayella, Diplophrys, Labrinthulids, Thraustochytrids, Biosecids, Oomycetes, Hypochytridiomycetes, Commation, Reticulosphaera, Pelagomonas, Pelagococcus, Ollicola, Aureococcus, Parmales, Diatoms, Xanthophytes, Phaeophytes (algas cafés), Eustigmatophytes, Raphidophytes, Synurids, Axodines (incluyendo 5 Rhizochromulinaales, Pedinellales, Dictyochales), Chrysomeridales, Sarcinochrysidales, Hydrurales, Hibberdiales y Chromulinales. Otros grupos preferidos de microalgas incluyen los miembros de las algas verdes y dinoflagelatos, incluyendo miembros del genero Crypthecodium. Más particularmente, las modalidades preferidas de la presente invención se 10 tratarán con referencia a un proceso para desarrollar microorganismos marinos, en particular algas, tales como Thraustochytrids del orden Thraustochytriales, más específicamente Thraustochytruales del género Thraustochytrium y Schizochytrium, incluyendo Thraustochytriales que se describen en la Patente de E. U . Nos. 5,340,594 y 5,340, 742 comúnmente 15 asignadas, ambas emitidas para Barclay, todas de las cuales se incorporan en la presente para referencia en su totalidad. Debe observarse que muchos expertos están de acuerdo con que Ulkenia no es un género separado, pero es, de hecho, parte del género Schizochytrium. Como se utiliza en la presente, el género Schizochytrium incluirá Ulkenia. 20 Los microorganismos preferidos son aquellos que producen los compuestos de interés a través de sistemas de sintasa de poliquetido. Tales microorganismos incluyen microorganismos que tienen un sistema de sintasa de poliquetido endógeno y microorganismos en los cuales un sistema de sintasa de poliquetido se ha formado genéticamente. Los 25 poliquetidos son productos naturales estructuralmente diversos que tienen *--Í-i¿*Sß***t******Í******m***?**I *Í*** *i * 1 *--*,! ' * : ?.*f.. * *- - , . , ,. ..A******** ^^ ^ ^ .a,,.,^ _ *^ ^, ^***** *?, .*,*M**.*, aa.a-H . ,. _ ^ . _. . ¿* * . ,. .***** .á-.„. un amplio rango de actividades biológicas, incluyendo propiedades farmacológicas y antibióticas. La biosíntesis de la estructura de cadena de carbono de poliquetidos se cataliza por sintasas de poliquetido. Como las sintasas de ácido graso estructural y mecanísticamente relacionadas, 5 las sintasas de poliquetido catalizan las condensaciones decarboxilativas repetidas entre tioésteres de ácido que extiende la cadena de carbono a dos carbonos en un momento. Sin embargo, las sintasas de ácido graso diferentes, las sintasas de poliquetido pueden generar gran variabilidad estructural en el producto final. Los sistemas de sintasa de poliquetido 10 individual puede hacer esto al utilizar unidades de inicio diferentes a acetato, al utilizar metil- o etil-malonato como la unidad extensora y al variar el ciclo reductivo de cetoreducción, deshidratación y reducción de enoilo en el grupo beta-ceto formado después de cada condensación. De particular interés es que los enlaces dobles de carbono-carbono que se 15 introducen por la etapa de deshidratación pueden retenerse en el producto final. Además, aunque estos enlaces dobles se encuentran inicialmente en la configuración trans, pueden convertirse a la configuración cis encontrada en DHA (y otros ácidos grasos polienóicos de interés) por isomerización enzimática. Tanto las reacciones de isomerización como 20 dehidrasa puede ocurrir en la ausencia de oxígeno molecular. Preferentemente, de acuerdo con la presente invención un proceso heterotrófico se proporciona para producir productos y microorganismos. El proceso comprende preferentemente cultivar los microorganismos en un medio de crecimiento en donde los 25 microorganismos contienen un sistema de sintasa de poliquetido. r " tw?rwflt lfflifp?)! f r \****** *^*^*^^*^ * -~^. ,, .„.«.* ,.....,, ,-.....,„„. .*....... *^****,...***?*,?****...^ ......... * *.* ****,* . ^^^lu** Preferentemente, el nivel de oxígeno disuelto se mantiene en menos de aproximadamente 8 por ciento, más preferentemente en menos de aproximadamente 4 por ciento, más preferentemente en menos de aproximadamente 3 por ciento, y más preferentemente en menos de aproximadamente 1 por ciento. Sin embargo, debe entenderse que la invención como una totalidad no intenta limitarse, y que un experto en la materia reconocerá que el concepto de la presente invención será aplicable a otros microorganismos que producen una variedad de otros compuestos, incluyendo otras composiciones de lípido, de acuerdo con las técnicas tratadas en la presente. Suponiendo una velocidad de producción relativamente constante de lípidos por una alga, es fácilmente aparente que la densidad de la biomasa más elevada conducirá a una cantidad total más elevada de lípidos que se producen por volumen. Los procesos de fermentación convencionales actuales para desarrollar algas produjeron una densidad de la biomasa de desde aproximadamente 50 a aproximadamente 80 g/L o menos. Los presente inventores han encontrado que utilizando los procesos de la presente invención, puede lograrse una densidad de la biomasa significativamente más alta que la densidad de la biomasa actualmente conocida. Preferentemente, los procesos de la presente invención producen densidad de la biomasa de al menos aproximadamente 100 g/L, más preferentemente al menos aproximadamente 130 g/L, aún más preferentemente al menos aproximadamente 150 g/L, todavía más preferentemente al menos aproximadamente 170 g/L, y más preferentemente más de aproximadamente 200 g/L. De esta manera, con tal densidad de la biomasa elevada, aún si la velocidad de producción de lípidos de algas se reduce ligeramente, la velocidad de producción de lípidos total por volumen es significativamente más elevada que los procesos actualmente conocidos. Los procesos de la presente invención para desarrollar microorganismos del orden Thraustochytriales incluyen agregar una fuente de carbono y una fuente de un nutriente limitado a un medio de fermentación que comprende los microorganismos a una velocidad suficiente para incrementar la densidad de la biomasa del medio de fermentación a aquellos arriba descritos. Como se utiliza en la presente, el término "fuente de nutriente limitante" se refiere a una fuente de un nutriente (incluyendo el nutriente por sí mismo) esencial para el crecimiento de un microorganismo en que, cuando el nutriente limitante se elimina del medio de crecimiento, su ausencia limita substancialmente el microorganismo de desarrollarse o replicarse más. Sin embargo, ya que los otros nutrientes están aún en abundancia, el organismo puede continuar haciendo y acumulando productos intracelulares y/o extracelulares. Al elegir un nutriente limitante específico, uno puede controlar el tipo de productos que se acumulan. Por lo tanto, el proporcionar una fuente de nutriente limitante a una cierta velocidad permite controlar tanto la velocidad de crecimiento del microorganismo y la producción o acumulación de productos deseados (por ejemplo, lípidos). Este proceso de fragmentación, en donde uno o más substratos (por ejemplo, una fuente de carbono y una fuente de nutriente limitante) se agregan en incrementos, generalmente se refiere a un proceso de fermentación alimentado por grupos. Se ha encontrado que cuando el substrato se agrega a un proceso de fermentación por grupos la gran cantidad de fuente de carbono presente (por ejemplo, aproximadamente 5 200 g/L o más por 60 g/L de densidad de la biomasa) tuvo un efecto dañino en los microorganismos. Sin unirse por ninguna teoría, se cree que tal cantidad elevada de fuente de carbono causa efectos dañinos, incluyendo tensión osmótica, para microorganismos e inhibe la productividad inicial de microorganismos. Los procesos de la presente 10 invención evita este efecto dañino no deseado aunque proporcionan una cantidad suficiente del substrato para lograr la densidad de la biomasa arriba descrita de los microorganismos. Los procesos de la presente invención para desarrollar microorganismos pueden incluir una etapa que incrementa la densidad de 15 biomasa. En la etapa que incrementa la densidad de la biomasa, el objetivo principal del proceso de fermentación es incrementar la densidad de la biomasa en el medio de fermentación para obtener la densidad de la biomasa arriba descrita. La velocidad de adición de la fuente de carbono se mantiene típicamente en un rango o nivel particular que no causa un 20 efecto dañino significativo en productividad de microorganismos, o la viabilidad de los microorganismos que resulta de capacidades insuficientes del equipo de fermentación para remover calor de y transferir gases a y desde el caldo líquido. Un rango apropiado de la cantidad de fuente de carbono necesario para un microorganismo particular durante un proceso 25 de fermentación se conoce bien por alguien de experiencia ordinaria en la materia. Preferentemente, una fuente de carbono de la presente invención es una fuente de carbono sin alcohol, es decir, una fuente de carbono que no contiene alcohol. Como se utiliza en la presente, un "alcohol" se refiere a un compuesto que tiene 4 o menos átomos de carbono con un grupo hidroxi , por ejemplo, metanol, etanol e isopropanolbut para el propósito de esta invención no incluir ácidos orgánicos hidroxi tal como ácido láctico y compuestos similares. Más preferentemente, una fuente de carbono de la presente invención es un carbohidrato, que incluye, pero no se limita a, fructosa, glucosa, sucrosa, molasas y almidón. Otras fuentes de carbono simples y complejas y fuentes de nitrógeno se describen en las patentes arriba referenciadas. Sin embargo, típicamente, un carbohidrato, preferentemente jarabe de maíz, se utiliza como la fuente de carbono primaria. Los ácidos grasos, en la forma de ácidos grasos hidroxi, triglicéridos, y di- y mono-glicéridos pueden también servir como la fuente de carbono. Las fuentes de nitrógeno particularmente preferidas son urea, nitrato, nitrito, proteína de soya, aminoácidos, proteína, licor excesivo de maíz, extracto de levadura, subproductos animales, sal de amonio inorgánica, más preferentemente sales de amonio de sulfato, hidróxido, y más preferentemente hidróxido de amonio. Otras fuentes de nutriente limitante incluyen fuentes de carbono (como se define arriba), fuentes de fosfato, fuentes de vitamina (tales como fuentes de vitamina B12, fuentes de pantotenato, fuentes de tiamina), y fuentes de metal de indicio (tales como fuentes de zinc, fuentes de cobre, fuentes de cobre, fuentes de cobalto, fuentes de níquel, fuentes de hierro, fuentes de manganeso, fuentes de molibdeno), y fuentes de metal principales (tales como fuentes de magnesio, fuentes de calcio, fuentes de sodio, fuentes de potasio, y fuentes de sílice, etc.). Las fuentes de indicio y las fuentes de metal principales pueden incluir sales de cloruro y sulfato de estos metales (por 5 ejemplo pero no limitándose a MgSO4»7H2O; MnCI2«4H2O; ZnSO4«7H2O; CoCI2»6H2O; Na2MoO4«2H2O; CuSO4»5H2O; N¡SO4«6H2O; FeSO4»7H2O; CaCI2; K2SO4; KCl y Na2SO4). Cuando se utiliza amoníaco como una fuente de nitrógeno, el medio de fermentación se vuelve ácido si no se controla por la adición de 10 base o reguladores. Cuando se utiliza hidróxido de amonio como la fuente de nitrógeno principal, también puede utilizarse para proporcionar un control de pH. Los microorganismos del orden de Thraustochytriales, en particular Thraustochytryales del género Thraustochytríum y Schizochytrium, se desarrollarán sobre un amplio rango de pH, por 15 ejemplo, desde aproximadamente pH 5 a aproximadamente pH 1 1 . Un rango de pH apropiado para la fermentación de un microorganismo particular se encuentra dentro del conocimiento de un experto en la materia. Los procesos de la presente invención para desarrollar 20 microorganismos también pueden incluir una etapa de producción. En esta etapa, el uso principal del substrato por los microorganismos no incrementa la densidad de la biomasa pero preferentemente utiliza el substrato para producir lípidos. Debe apreciarse que los lípidos también se producen por los microorganismos durante la etapa que incrementa la 25 densidad de la biomasa; sin embargo, como se establece arriba, el objeto -j??^ia|fciMIÉ l É«MÉi?AÉM ij J.a^ at- -* »¡B**f * t****. ************* principal en la etapa que incrementa la densidad de la biomasa es incrementar la densidad de la biomasa. Típicamente, durante la etapa producción la adición del substrato nutriente limitante se reduce o detiene preferentemente. Se cree generalmente de manera previa que la presencia de oxígeno disuelto en el medio de fermentación es crucial en la producción de compuestos poli no saturados, incluyendo ácidos grasos poli no saturados omega-3 y/u omega-6, por microorganismos eucarióticos. De esta manera, se cree que una cantidad relativamente grande de oxígeno disuelto en el medio de fermentación se prefiere. Sorprendentemente e inesperadamente, sin embargo, los presentes inventores han encontrado que la velocidad de producción de lípidos se incrementa dramáticamente cuando el nivel de oxígeno disuelto durante la etapa de producción se reduce. De esta manera, aunque el nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación durante la etapa que incrementa la densidad de la biomasa es preferentemente al menos de 8% de saturación, y preferentemente al menos aproximadamente de 4% de saturación, durante la etapa de producción el oxígeno disuelto en el medio de fermentación se reduce a aproximadamente 3% de saturación o menos, preferentemente aproximadamente 1 % de saturación o menos, y más preferentemente aproximadamente 0% de saturación. Al inicio de la fermentación DO puede estar en o cerca de la saturación y a medida que los microbios van creciendo permite arrastrar hacia abajo a estos puntos establecidos de DO bajos. En una modalidad particular de la presente invención, la cantidad de nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación se varía durante el proceso de fermentación. Por ejemplo, para un proceso de fermentación con tiempo de fermentación total de desde aproximadamente 90 horas a aproximadamente 100 horas, el nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación se mantiene a aproximadamente 8% durante las primeras 24 horas, aproximadamente 4% desde aproximadamente la 24t hora a aproximadamente la 40va hora, y aproximadamente 0.5% o menos desde aproximadamente la 40va hora al final del proceso de fermentación. La cantidad de oxígeno disuelto presente en el medio de fermentación puede controlarse al controlar la cantidad de oxígeno en el espacio superior del fermentador, o preferentemente al controlar la velocidad a la cual el medio de fermentación se agita (o revuelve). Por ejemplo, una alta agitación (o movimiento para revolver) resulta en una cantidad más relativamente más elevada de oxígeno disuelto en el medio de fermentación que una velocidad de agitación baja. Por ejemplo, en un fermentador de aproximadamente 14,000 de capacidad de galón la velocidad de agitación se establece en desde aproximadamente 50 rpm a aproximadamente 70 rpm durante las primeras 12 horas, desde aproximadamente 55 rpm a aproximadamente 80 rpm durante aproximadamente la 12va hora a aproximadamente la 18va hora y desde aproximadamente 70 rpm a aproximadamente 90 rpm desde aproximadamente la 18va hora al final del proceso de fermentación para lograr el nivel de oxígeno disuelto tratado arriba para un proceso de fermentación total de desde aproximadamente 90 horas a aproximadamente 100 horas. Un rango particular de velocidades de agitación necesario para lograr una cantidad particular de oxígeno disuelto llbiblteÉíaiiUWtMIíaiHIUtttia IIIIkriMIIIÉMIlÉi •' * --»»^""»""~." en el medio de fermentación puede determinarse fácilmente por alguien de experiencia ordinaria en la materia. Una temperatura preferida para procesos de la presente invención es al menos aproximadamente 20°C, más preferentemente al 5 menos aproximadamente 25°C, y más preferentemente al menos aproximadamente 30°C. Debe apreciarse que el agua fría puede retener una cantidad más elevada de oxígeno disuelto que el agua caliente. De esta manera, una temperatura del medio de fermentación más elevada tiene el beneficio adicional de reducir la cantidad de oxígeno disuelto, que 10 es particularmente deseado como se describe arriba. Ciertos microorganismos pueden requerir una cierta cantidad de minerales de salina en el medio de fermentación . Estos minerales de salina, especialmente iones de cloruro, pueden causar la corrosión del fermentador y otro equipo de procesamiento aguas abajo. Para prevenir o 15 reducir estos efectos indeseados debidos a una cantidad relativamente grande de iones de cloruro presentes en el medio de fermentación, los procesos de la presente invención también pueden incluir sales de sodio que no contienen cloruro, preferentemente sulfato de sodio, en el medio de fermentación como una fuente de sodio. Más particularmente, una 20 porción significativa de los requerimientos de sodio de la fermentación se suministra como sales de sodio que no contienen cloruro. Por ejemplo, menos de aproximadamente 75% del sodio en el medio de fermentación se suministra como cloruro de sodio, más preferentemente menos de aproximadamente 50% y más preferentemente menos de aproximadamente 25 25%. Los microorganismos de la presente invención pueden desarrollarse en concentraciones de cloruro de menos de aproximadamente 3 g/L, más preferentemente menos de aproximadamente 500 mg/L, más preferentemente menos de aproximadamente 250 mg/L y más preferentemente entre aproximadamente 60 mg/L y aproximadamente 120 mg/L. Las sales de sodio que no contienen cloruro puede incluir ceniza de sosa (una mezcla de carbonato de sodio y óxido de sodio), carbonato de sodio, bicarbonato de sodio, sulfato de sodio y mezclas de los mimos, y preferentemente incluyen sulfato de sodio. La ceniza de sosa, carbonato de sodio y bicarbonato de sodio tienden a incrementar el pH del medio de fermentación, requiriendo así que las etapas de control mantengan el pH apropiado del medio. La concentración de sulfato de sodio es eficaz para satisfacer los requerimientos de salinidad de los microorganismos, preferentemente la concentración de sodio (expresada como g/L de Na) es de al menos aproximadamente 1 g/L, más preferentemente en el rango de desde aproximadamente 1 g/L a aproximadamente 50 g/L y más preferentemente en el rango de desde aproximadamente 2 g/L a aproximadamente 25 g/L. Varios parámetros de fermentación para inocular, desarrollar y recuperar microorganismos se tratan en detalle en la Patente de E. U . No. 5, 130,242, que se incorpora en la presente para referencia en su totalidad. Cualquier método de aislamiento actualmente conocido puede utilizarse para aislar los microorganismos del medio de fermentación, incluyendo centrifugación, filtración, ultrafiltración, decantación, y evaporación de solvente. Se ha encontrado por los presentes inventores que debido a que tal densidad de la biomasa elevada que resulta de los procesos de la presente invención, cuando se utiliza un centrifugado para recuperar los microorganismos, se prefiere diluir el medio de fermentación al agregar agua, lo que reduce la densidad de la biomasa, permitiendo así una separación más eficaz de microorganismos del medio de fermentación. Las densidades de biomasa muy elevadas logradas en la presente invención también facilitan los procesos de "solvatación" para la recuperación de lípidos microbiales. Los procesos preferidos par alisar las células en el fermentador se describen en la Solicitud de Patente Provisional de E. U . No. de Serie 60/177, 125 titulada "SOLVENTLESS EXTRACTION PROCESS" presentada el 19 de Enero de 2000, Solicitud de Patente de E. U . No. titulada "SOLVENTLESS EXTRACTION PROCESS" presentada el 19 de Enero de 2001 , y la Solicitud de Patente PCT No. de Serie. titulada "SOLVENTLESS EXTRACTION PROCESS" presentada el 19 de Enero de 2001 , que se incorporan en la presente para referencia en su totalidad. Los procesos preferidos para recuperar los lípidos una vez que las células se permeabilizan, rompen o lisan en el fermentador (lo que permite que la emulsión de lípido se rompa, y que la fracción rica en lípido se recupere) incluyen el procesos de desaceitado mencionado en WO 96/05278 que se incorpora en la presente para referencia en su totalidad. En este proceso un compuesto soluble en agua, por ejemplo, alcohol o acetona, se agrega a la emulsión de aceite/agua par romper la emulsión y la mezcla resultante se separa por separación de gravedad , por ejemplo, centrifugación. Este proceso también puede modificarse para utilizar otros agentes (solubles en agua y/o lípido) para romper la emulsión. Alternativamente, los microorganismos se recuperan en una forma seca del medio de fermentación al evaporar agua del medio de fermentación, por ejemplo, al contactar el medio de fermentación directamente (es decir, sin pre-concentración, por ejemplo, por centrifugación) con un secador tal como un aparato secador de tambor, es decir, un proceso de recuperación del secador de tambor directo. Cuando se utiliza el proceso de recuperación del secador de tambor directo para aislar los microorganismos, típicamente un secador de tambor calentado por vapor se utiliza. Además cuando se utiliza el proceso de recuperación secador de tambor directo, la densidad de la biomasa del medio de fermentación es preferentemente al menos de 130 g/L, más preferentemente al menos aproximadamente de 150 g/L, y más preferentemente al menos aproximadamente de 180 g/L. Esta densidad de la biomasa elevada se desea generalmente para el proceso de recuperación del secador de tambor directo debido a que a una densidad de la biomasa más baja, el medio de fermentación comprende una cantidad suficiente de agua para enfriar el tambor significativamente, resultando así en el secado incompleto de los microorganismos. Otros métodos para secar células, incluyendo secado por rocío, se conocen bien por alguien de experiencia ordinaria en la materia. Los procesos de la presente invención proporcionan una velocidad de producción de lípido promedio de al menos aproximadamente 0.5 g/L/hr, preferentemente al menos aproximadamente 0.7 g/L/hr, más preferentemente al menos aproximadamente 0.9 g/L/hr, y más preferentemente al menos aproximadamente 1 .0 g/L/hr. Además, los lípidos producidos por los procesos de la presente invención contienen lípidos poli no saturados en la cantidad mayor a aproximadamente 15%, preferentemente mayor a aproximadamente 20%, más preferentemente 5 mayor a aproximadamente 25%, todavía más preferentemente mayor a aproximadamente 30% y más preferentemente mayor a aproximadamente 35%. Los lípidos pueden recuperarse de ya sea microorganismos secos o de los microorganismos en el medio de fermentación. Generalmente, al menos aproximadamente 20% de los lípidos producidos por los 10 microorganismos en los procesos de la presente invención son ácidos grasos poli no saturados omega-3 y/u omega-6, más preferentemente al menos aproximadamente 40% de los lípidos son ácidos grasos poli no saturados omega-3 y/u omega-6, y más preferentemente al menos aproximadamente 50% de los lípidos son ácidos grasos poli no saturados 15 omega-3 y/u omega-6. Alternativamente, los procesos de la presente invención proporcionan una velocidad de producción de ácido graso omega-3 (por ejemplo, DHA) de al menos aproximadamente 0.2 g de ácido graso omega-3 (por ejemplo, DHA)/L/hr, preferentemente al menos aproximadamente 0.3 g de ácido graso omega-3 (por ejemplo, DHA/L/hr, 20 más preferentemente al menos aproximadamente 0.4 g de ácido graso omega-3 (por ejemplo, DHA)/L/hr, más preferentemente al menos aproximadamente 0.5 g de ácido graso omega-3 (por ejemplo, DHA)/L/hr. Alternativamente, los procesos de la presente invención proporcionan una velocidad de producción de ácido graso omega-6 promedio (por ejemplo, 25 DPAn-6) de al menos aproximadamente 0.07 g de ácido graso omega-6 ^a^aa?il?iiMi >éiBBt,ii¡t.J,a,J,^. h^ ^..i.a. (por ejemplo, DPAn-6)/L/hr, preferentemente al menos aproximadamente 0.1 g de ácido graso omega-6 (por ejemplo, DPAn-6)/L/hr, más preferentemente al menos preferentemente aproximadamente 0. 13 g de ácido graso omega-6 (por ejemplo, DPAn-6)/L/hr, y más preferentemente al menos aproximadamente 0.17 g de ácido graso omega-6 (por ejemplo, DPAn-6)/L/hr. Aún alternativamente, al menos aproximadamente 25% del lípido es DHA (en base al éster de metilo de ácido graso total), preferentemente al menos aproximadamente 30%, más preferentemente al menos aproximadamente 35% y más preferentemente al menos aproximadamente 40%. Los microorganismos, lípidos extraídos de los mismos, la biomasa que permanece después de la extracción del lípido o combinaciones de los mismos pueden utilizarse de manera directa como un ingrediente alimenticio, tal como un ingrediente en bebidas, salsas, alimentos lácteos (tales como leche, yogur, queso y helado) y bienes cocinados; complementos nutricionales (en formas de cápsula o tableta); suplemento alimenticio o alimento para cualquier animal cuya carne o productos se consuman por humanos; suplementos alimenticios, incluyendo alimento para bebe y fórmula para infantes; y farmacéuticos (en aplicación de terapia adjunta o directa) . El término "animal" significa cualquier organismo que pertenece al reino Animal e incluye, sin limitación, cualquier animal de los cuales se deriva la carne salvajina, mariscos, carne, puerco o cordero. Los mariscos se derivan de, sin limitación, pescado, camarón y conchas. El término "productos" incluye cualquier producto diferente al derivado de la carne de tales animales, incluyendo, sin limitación, huevos, leche u otros productos. Cuando se alimenta a tales animales, los lípidos poli no saturados pueden incorporarse en la carne, leche, huevos u otros productos de tales animales para incrementar su contenido de estos lípidos. Los objetos adicionales, ventajas y nuevas características de esta invención será aparentes para aquellos expertos en la materia en la examinación de los siguientes ejemplos de la misma, que no se proponen como limitantes. EJEMPLOS La cepa de Schizochytrium utilizada en estos ejemplos produce dos ácidos polienóicos primarios, DHAn-3 y DPAn-6 en la proporción de generalmente aproximadamente 3: 1 y cantidades pequeñas de otros ácidos polienóicos, tales como EPA y C20:3, bajo una amplia variedad de condiciones de fermentación. De esta manera, aunque los siguientes ejemplos solamente listan la cantidad de DHA, uno puede fácilmente calcular la cantidad de DPA(n-6) producida al utilizar la proporción arriba descrita. Ejemplo 1 Este ejemplo ilustra el efecto de contenido de oxígeno en un medio de fermentación en productividad de lípido. Los resultados de fermentación de Schizochytrium ATCC No. 20888 en varios niveles de contenido de oxígeno disuelto se miden . Los resultados se muestran en la Figura 1 , en donde RCS es concentración residual de azúcar, y DCW es un peso celular seco. Ejemplo 2 M MÜHtaHfiMÉb l ipin i i m _a ?á¡M Este ejemplo también ilustra el efecto de bajo contenido de oxígeno en el medio de fermentación en contenido de DHA (% de peso en seco) del producto de biomasa final. Un experimento de tipo "escala descendente" se conduce en matraces Erlenmeyer de 250 mL para imitar el efecto del bajo contenido de oxígeno del contenido de DHA en células Schizochytrium sp. cultivadas en termentadores a gran escala. Schizochytrium sp (ATCC 20888) se cultiva en medio O4-4. Este medio de cultivo consiste de lo siguiente en una base por litro disuelta en agua desionizada: Na2SO4 12.61 g; MgSO4»7H2O 1 .2 g; KCl 0.25 g; CaCI2 0.05 g; glutamato de monosodio 7.0 g; glucosa 10 g; KH2PO4 0.5 g; NaHCO3 0. 1 g ; extracto de levadura 0.1 g; mezcla de vitamina 1 .0 mL; metales Pll 1 .0 mL. La mezcla de metal Pll contiene (por litro): 6.0 g de Na2EDTA, 0.29 g de FeCI3«6H2O, 6.84 g de H3BO3, 0.86 g de MnCI2«4H2O, 0.06 g de ZnCI2, 0.026 g de CoCI2»6H2O, 0.052 g de NiSO «H2O, 0.002 CuSO4»H2O y 0.005 g de Na2MoO4«2H2O. La mezcla de vitamina contiene (por litro): 100 mg de tiamina, 0.5 mg de biotina y 0.5 mg de cianocobalamina. El pH del medio de cultivo se ajusta a 7.0 y se el sintetizador se filtra entonces. La idea detrás de este experimento de escala descendente fue cultivar las células en matraces de agitación con diferentes volúmenes del medio de cultivo en los matraces, matraces casi llenos (por ejemplo, 200 mL en un matraz de agitación de 250 mL) no se mezclaría bien en una tabla agitadora y por lo tanto a medida que las células se desarrollan, las bajas condiciones de oxígeno disuelto se generarían. Por lo tanto, 4 tratamientos se establecen en el experimento, cada uno conducido por duplicado: (1) matraces de 20 mL llenados con 50 mL de medio de cultivo; (2) matraces de 250 mL llenados con 100 mL de medio de cultivo; (3) matraces de 250 mL llenados con 150 mL de medio de cultivo; y (4) matraces de agitación de 250 mL llenados con 200 mL de medio de cultivo. Cada uno de los ocho matraces se inoculan con células de un cultivo de 48 horas de Schizochytrium cultivado en medio O4-4 bajo las condiciones en el tratamiento 1 , y a 28°C y 220 rpm en una tabla agitadora. Los ocho matraces para el experimento se colocan en una tabla agitadora (220 rpm) en un incubador (28°C) y cultivan por 48 horas en la obscuridad. Al final del experimento, los niveles de oxígeno disuelto (DO) en cada matraz se miden con un medido de oxígeno disuelto YSI , ph del medio de cultivo también se determina, y el peso seco de las células y su contenido de ácido graso también se mide. Los resultados del experimento se mencionan en la Tabla 1 .
Tabla 1 . Resultados del experimento de escala descendente que examina el efecto de bajas concentraciones de oxígeno disuelto en el contenido de ácido graso altamente sin saturar de cadena larga (DHA % de peso en seco) de Schizochytrium sp.
Los resultados indican que el contenido de lípido (como %FAME) y contenido de DHA (% de peso en seco) fueron más elevados para células cultivadas a bajos niveles de oxígeno disuelto, mientras más bajo sea el nivel de oxígeno disuelto mayor será el contenido de DHA y lípido. Esto es inesperado debido a que se ha creído generalmente que el oxígeno es necesario para formar enlaces desaturados (dobles). Es sorprendente que demasiado DHA se formo a nivel bajo de oxígeno disuelto, debido a que DHA es uno de los ácidos grasos más no saturados. Aunque la producción de biomasa se reduce a medida que el nivel de oxígeno disuelto se reduce, el contenido de DHA se incrementa. Por lo tanto, es ventajoso tener una fase de crecimiento con niveles de oxígeno disuelto más elevados para maximizar la formación de biomasa y después disminuir el nivel de oxígeno disuelto para maximizar la producción de ácido graso de cadena larga. Ejemplo 3 Este ejemplo ilustra la reproducción de procesos de la presente invención. Los microorganismos se producen utilizando termentadores con un volumen de trabajo nominal de 1 ,200 galones. El caldo de fermentación resultante se concentra y los microorganismos se secan utilizando un secador de tambor. Los lípidos de alícuotas de los microorganismos resultantes se extraen y purifican para producir un aceite desodorizado, blanqueado y refinado. Aproximadamente 3,000 rpm de d-1 - -tocoferil acetato se agregan para propósitos de suplemento nutricional antes del análisis del lípido. Nueve fermentaciones de Schizochytrium ATCC No. 20888 se corren y los resultados se muestran en la Tabla 2. El nivel de oxígeno disuelto fue aproximadamente 8% durante los primeros 24 horas y aproximadamente 4% de aquí en adelante.
Tabla 2. Resultados de la fermentación alimentada por grupo para la producción de DHA de Schizochytrium sp. 1 . producción real de densidad de la biomasa 2. contenido de DHA como % de peso en seco de la célula 3. contenido de ácido graso total como % en peso en seco de la célula (medido como esteres de metilo) . 4. (gramos de DHA)/L/Hr. 5. promedio 6. desviación estándar 7. coeficientes de variabilidad. Los coeficientes de los valores de ?*áa? variabilidad por debajo de 5% indican un proceso que tiene excelente reproducción, los valores entre 5% y 10% indican un proceso que tiene buena reproducción y los valores entre 10% y 20% indican un proceso que tiene reproducción razonable. El jarabe de maíz se alimenta hasta que el volumen en el fermentador alcanzó aproximadamente 1 ,200 galones, momento en el cual se detiene la adición del jarabe de maíz. El proceso de fermentación se detiene una vez que la concentración de azúcar residual cae por debajo de 5 g/L. La edad típica, de inoculación al final, fue aproximadamente 100 horas. El caldo de fermentación, es decir, medio de fermentación, se diluye con agua utilizando aproximadamente una proporción de 2: 1 para reducir el contenido de ceniza del producto final y ayuda a mejorar la separación de fase durante la etapa de centrifugación. La pasta celular concentrada se calienta a 160°F (aproximadamente 71 °C) y secan en un secador de doble tambor Blaw Knox (42"x36") . Sin embargo, preferentemente, los microorganismos se secan directamente en un secador de tambor sin centrifugación anterior. El resultado del análisis de los lípidos extraídos de las alícuotas de cada una de las entradas en la Tabla se resume en la Tabla 3.
Tabla 3. Análisis de la biomasa microbial producida en las fermentaciones alimentadas por grupos mencionadas en la Tabla 2. Entrada % de DHA relativo a FAME1 I % en peso de lípido total i?*a.?*4?*.éi¡?¿??Í ?* 1 . ver Tabla 2. 2. ver discusión anterior. 3. desviación estándar. 4. coeficientes de variabilidad. Los coeficientes de los valores de variabilidad por debajo de 5% indican un proceso que tiene excelente reproducción, los valores entre 5% y 10% indican un proceso que tiene buena reproducción y los valores entre 10% y 20% indican un proceso que tiene reproducción razonable. Al menos que se establezca de otra forma, el medio de fermentación utilizado a través de la sección de Ejemplos incluye los siguientes ingredientes, en donde el primer número indica concentración objetivo nominal y el número en paréntesis indica el rango aceptable: sulfato de sodio 12 g/L (1 1 -13); KCl 0.5 g/L (0.45-0.55); MgSO4.7H2O g/L (1 .8-2.2); Hodag K-60 antiespuma 0.35 g/L (0.3-0.4); K2SO4 0.65 g/L (0.60-0.70); KH2PO4 1 g/L (0.9-1 .1 ); (N H4)2SO4 1 g/L (0.95-1 .1 ); CaCI2.2H2O 0.17 g/L (0.15-0.19); jarabe de maíz 95 DE (base de sólidos) 4.5 g/L (2-10); McCI2«4H2O 3 mg/L (2.7-3.3); ZnSO4«7H2O 3 mg/L (2.7-3.3); CoCI2«6H2O 0.04 mg/L (0.035-0.045); Na2MoO4«2H2O 0.04 mg/L (0-0.045) ; CuSO4«5H2O 2 mg/L (1 .8-2.2); NiSO4»6H2O 2 mg/L (1.8-2.2); FeSO4«7H2O 10 mg/L (9-1 1 ); tiamina 9.5 mg/L (4-1 5); vitamina B12 0. 1 5 mg/L (0.05-0.25) y Pantotenato de Calcio 3.2 mg/L (1 .3-5.1 ). Además, 28% de solución de N H OH se utiliza como la fuente de nitrógeno. El contenido de ceniza de los microorganismos secos es aproximadamente 6% en peso. Ejemplo 4 Este ejemplo ilustra el efecto de nivel de oxígeno disuelto reducido en el medio de fermentación en la productividad de microorganismos en la escala de 14,000 galones. Utilizando el procedimiento descrito en el Ejemplo 3, una fermentación de volumen nominal de 14,000 galones se conduce utilizando una cepa Schízochytrium de tipo silvestre, que puede obtenerse utilizando los procesos de aislamiento descritos en las Patentes de E. U . Nos. 5,340,594 y 5,340,742 arriba descritas. El nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación es aproximadamente 8% durante las primeras 24 horas, aproximadamente 4% desde la 24ta hora a la 40va hora y aproximadamente 0.5% de la 40 a hora al final del proceso de fermentación. Los resultados de este nivel de oxígeno disuelto inferior en los procesos del medio de fermentación se muestran en la Tabla 4.
Tabla 4. Resultados de las fermentaciones alimentadas por grupos a escala de 14,000 galones de Schizochytrium en concentraciones reducidas de oxígeno disuelto. 10 15 20 Ejemplo 5 Este ejemplo ilustra el efecto de nivel de oxígeno reducido disuelvo en el medio de fermentación en la productividad de microorganismos en una escala de 41 ,000 galones. 25 Los mismos procedimientos del Ejemplo 4 se emplean, excepto que la fermentación se conduce en un fermentador de 41 ,000 galones. Los volúmenes del medio de cultivo se incrementan para mantener las concentraciones del compuesto objetivo en esta escala. Los resultados se muestra en la Tabla 5.
Tabla 5. Fermentación a escala de 41 ,000 galones de Schizochytrium Ejemplo 6 Este ejemplo ilustra el efecto de nitrógeno extra en el proceso de fermentación de la presente invención. Cuatro conjuntos de experimentos alimentados por grupos a escala de 250 L se conducen utilizando un procedimiento similar al Ejemplo 4. Dos experimentos de control y dos experimentos que contienen amoníaco extra (1 .15x y 1 .25x la cantidad normal) se conducen .
Los resultados se muestran en la Tabla 6.
Tabla 6. Efectos de amoníaco extra en la fermentación de Schizochytrium En general, el nitrógeno extra tienen une efecto negativo en el desempeño de la fermentación, ya que las reducciones significativas se observan en la productividad de DHA para los dos grupos en donde se agrega amoníaco extra. Como se muestra en la Tabla 6, los grupos de control resultan en niveles de DHA finales de 18.4% y 22.1 % de peso en ama******* '--Kf-r seco celular total contra 9.2% (1 .15x amoníaco) y 12.6% (1 .25x amoníaco) para grupos complementados con nitrógeno extra. Ejemplo 7 Este ejemplo muestra un perfil cinético de un proceso de fermentación de la presente invención. Un experimento alimentado por grupos a escala de 1000 galones se conduce utilizando un procedimiento similar al Ejemplo 4. El perfil cinético del proceso de fermentación se muestra en la Tabla 7.
Tabla 7. Perfil cinético para una fermentación alimentada por grupos a escala de 1 ,000 galones de Schizochytrium * Dos muestras separadas se analizan en 48 hrs. ** Esto es para una muestra en peso de célula secos enjuagado (DCW).
Otros valores reportados son para muestras no deseadas. Ejemplo 8 Este ejemplo ilustra el efecto de la cantidad de fuente de aáÁAA,*. .¿?MIfattltatfcaaifefc». *,-* **. -******ß*ua**^*s*t^ » r.^***.** ?,*ti*A*m. *-. carbono en productividad. Tres diferentes procesos de fermentación utilizando el proceso del Ejemplo 4 se conducen utilizando varias cantidades de fuente de carbono. Los resultados se muestran en la Tabla 8.
Tabla 8. Resultados de fermentación para varias cantidades de fuente de carbono en la fermentación de Schizochytrium Ejemplo 9 Este ejemplo ilustra el efecto de limitación nutriente en eficiencia de conversión a biomasa, lípido y más específicamente DHA. Un experimento de cultivo continuo para investigar el efecto de la limitación nutriente se realiza al cultivar Schizochytrium ATCC No. 20888 en un fermentador Applikon de 2 litros de volumen en medio de crecimiento basal (ICM-2) que consiste de los siguientes compuestos (concentración nominal): ingredientes del Grupo I : Na2SO4 (18.54 g/L), MgSO4»7H2O (2.0 g/L) y KCL (0.572 g/L); ingredientes del Grupo I I (cada uno preparado por separado): glucosa (43.81 g/L), KH2PO (1 .28 g/L), CaCI2«5H2O (0.025 g/L) y (NH4)SO4 (6.538 g/L); ingredientes del Grupo l ll : Na2EDTA (6.0 mg/L), FeCI3-6H2O (0.29 mg/L), H3BO3 (6.84 mg/L) , MnCI2«4H2O (0.86 mg/L), ZnSO4«7H2O (0.237 mg/L), CoCI2«2H2O (0.026 j?*é?éátL * ^^^^^ - - — mg/L), Na2MoO4«2H2O (0.005 mg/L), CuSO4«5H2O (0.002 mg/L) y NiSO4«6H2O (0.052 mg/L) ; e ingredientes del Grupo IV: tiamina HCl (0.2 mg/L), Vitamina B12 (0.005 mg/L), pantotenato de calcio (0.2 mg/L). Los grupos I y I I se esterilizaron en autoclave, mientras que los Grupos l l l y IV 5 se esterilizan por filtro antes de agregar al fermentador. El medio de crecimiento se inocula entonces con Schizochytrium y desarrollarse bajo condiciones controladas de 30°C, pH 5.5 y oxígeno disuelto de 20% de saturación hasta que se logre la densidad celular máxima. Un modo de operación continuo se establece entonces al 10 bombear simultáneamente el medio de alimentación ICM-2 estéril en el fermentador y remover el caldo que contiene células Schizochytrium a una velocidad de flujo suficiente para mantener una velocidad de dilución de 0.06 hr" 1 , hasta que se alcanza un estado fijo. Para investigar el efecto de limitación nutriente, el compuesto que contiene el nutriente requerido 15 específico se disminuye en el medio alimentado ICM-2 de manera que este nutriente se elimina en el caldo que contiene célula de salida, de manera que el crecimiento de las células se limita por ausencia del nutriente particular requerido. Una vez que se establece la operación de estado fijo para cada condición, la biomasa seca del caldo final, glucosa residual, y 20 concentraciones nutrientes limitantes, contenido de lípido y contenido de DHA de las células se miden. La eficacia de conversión de glucosa a biomasa se calcula al dividir la glucosa total consumada por la biomasa seca total formada, y expresada en una base de porcentaje. Los efectos del crecimiento limitante por cada nutriente 25 individual se estudiaron al repetir este experimento para cada nutriente *^^**a¿? *?^ ***?t. individual litado en la siguiente tabla. Los resultados finales se resumen en la siguiente tabla: Tabla 9. Efecto de la limitación nutriente en la producción de biomasa, eficacia de conversión (glucosa -> biomasa) , contenido de lípido y contenido de DHA de Schizochytrium sp. 1 . concentración de biomasa seca (gramos/litro) 2. coeficiente de producción (% de biomasa producida/glucosa consum?da)( 3. concentración de glucosa residual en caldo (gramos/litro) 4. contenido de lípido de biomasa seca (g de lípido (como FAME)/g de biomasa seca) 5. contenido de DH de biomasa seca (g de DHA/g de biomasa seca). Está claro a partir de la tabla que la limitación de nitrógeno resultó en la acumulación más elevada de DHA en las células, seguida por fosfato, sodio, níquel, manganeso, glucosa(carbono), zinc y hierro. Esta información puede emplearse comercialmente al alimentar uno o más de estos nutrientes a una fermentación por grupos a una velocidad suficiente para limitar el crecimiento celular. En el caso más preferido, el nitrógeno se alimenta en una manera limitante a la fermentación por grupos para maximizar el contenido de DHA de las células. Otros nutrientes (o mezclas de los mismos) pueden alimentarse en una manera limitante para maximizar la producción de biomasa u otros productos valuables. Otros elementos biológicamente requeridos o nutrientes que no se evalúan , tales como azufre, también podrían emplearse como nutrientes limitantes en esta estrategia de control de fermentación. La presente invención, en varias modalidades, incluye componentes, métodos, procesos, sistemas y/o aparatos substancialmente como se representan y describen en la presente, incluyendo varias modalidades, subcombinaciones, y subconjuntos de los mismos. Aquellos de experiencia ordinaria en la materia entenderán como hacer y utilizar la presente invención después de entender la presente descripción. La presente invención, en varias modalidades, incluye ílA**k* t.?* . ?- * *•-*.*! ** proporcionar dispositivos y procesos en la ausencia de asuntos no representados y/o descritos en la presente o en diversas modalidades de la misma, incluyendo en la ausencia de tales asuntos como puede utilizarse en procesos o dispositivos previos, por ejemplo, para mejorar el 5 desempeño, logrando facilidad y/o reducción del costo de implementación. La discusión anterior de la invención se ha presentado para propósitos de ilustración y descripción. Lo anterior no propone limitar la invención a la forma o formas descritas en la presente. Aunque la descripción de la invención ha incluido la descripción de una o más 10 modalidades y ciertas variaciones y modificaciones, otras variaciones y modificaciones se encuentran dentro del alcance de la invención, por ejemplo, como se puede encontrar dentro de la experiencia y el conocimiento de aquellos en la materia, después de entender la presente descripción. Se propone obtener derechos que incluyen las modalidades 15 alternativas al grado permitido, incluyendo estructuras alternas, intercambiables y/o equivalentes, funciones, rangos o etapas a aquellas reivindicadas, ya sea o no que tales estructuras equivalentes y/o intercambiables, alternas, funciones, rangos o etapas se describan en la presente, y sin proponer dedicar públicamente cualquier materia sujeto 20 patentable. ?**?ái» it mß*^ ***M.j,*?.*????i ^Uma ***m*

Claims (1)

  1. REIVINDICACIONES 1 . Un proceso para producir lípidos que contienen ácidos grasos polienóicos de microorganismos eucarióticos capaces de producir al menos aproximadamente 20% de su biomasa como lípidos, que 5 comprende agregar a un medio de fermentación que comprende dichos microorganismos una fuente de carbono sin alcohol y una fuente de nutriente limitante a una velocidad suficiente para incrementar la densidad de la biomasa de dicho medio de fermentación a al menos aproximadamente 100 g/L. 10 2. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dicho proceso comprende una etapa que incrementa la densidad de la biomasa, caracterizado porque dicha etapa que incrementa la densidad de la biomasa comprende agregar dicha fuente de carbono y dicha fuente de nutriente limitante y dicha etapa de producción comprende agregar 15 dicha fuente de carbono con poco o nada de dicha fuente de nutriente limitada para inducir las condiciones limitantes de nutriente que inducen la producción de lípido. 3. El proceso según la reivindicación 2, caracterizado porque la cantidad de oxígeno disuelto presente en dicho medio de 20 fermentación durante dicha etapa de producción es inferior a la cantidad de oxígeno disuelto presente en dicho medio de fermentación durante dicha etapa que incrementa la densidad de la biomasa. 4. El proceso según la reivindicación 3, caracterizado porque la cantidad de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación 25 durante dicha etapa que incrementa la densidad de la biomasa es al W^^ *^ . ~-**-. ~ ~~?*.**-. * ? ?*-»L»~«***. "• ' ' * " -«—«—-'»> menos aproximadamente 4% . 5. El proceso según la reivindicación 4, caracterizado porque la cantidad de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante dicha etapa de producción es menor a aproximadamente 1 %. 6. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dicha fuente de carbono sin alcohol comprende un carbohidrato. 7. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante se selecciona del grupo que consiste de fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, fuentes de fosfato, fuentes de vitamina (tales como fuentes de vitamina B12, fuentes de pantotenato, fuentes de tiamina), fuentes de metal de indicio (tales como fuentes de zinc, fuentes de cobre, fuentes de cobalto, fuentes de níquel, fuentes de hierro, fuentes de manganeso, fuentes de molibdeno) , y fuentes de metal principales (tales como fuentes de magnesio, fuentes de calcio, fuentes de sodio, fuentes de potasio), fuentes de sílice y mezclas de los mismos. 8. El proceso según la reivindicación 7, caracterizado porque dichas fuentes de metal de indicio y fuentes de metal principales se seleccionan del grupo que consiste de sulfato y sales de cloruro de estos metales (tales como MgSO4»7H2O; MnCI2«4H2O; ZnSO4«7H2O; CoCI2«6H2O; Na2MoO4«2H2O; CuSO4»5H2O; NiSO »6H2O; FeSO4«7H2O; CaCI2; K2SO ; KCl y Na2SO ) y mezclas de los mismos. 9. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante comprende una fuente de nitrógeno. l?*? *M. **. ****?.*****?******?*****t***i**.*.*.**** a. á. 1.^^.^^ . J.J»^JMM.Mt f1rtfrt.. i. * ,* * *.*,* .*-.* ..**. „. ..,, ,1, T , ) IJjgíHl 10. El proceso según la reivindicación 9, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende una sal de amonio inorgánica. 1 1 . El proceso según la reivindicación 9, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende hidróxido de amonio. 12. El proceso según la reivindicación 10, caracterizado porque pH del medio de fermentación se controla por dicha fuente de nutriente limitante. 13. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dicho medio de fermentación se encuentra a una temperatura de al menos aproximadamente 20°C. 14. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dicho proceso produce lípidos a una velocidad promedio de al menos aproximadamente 0.5 g/L/hr. 15. El proceso según la reivindicación 14, caracterizado porque al menos aproximadamente 15% de dichos lípidos son lípidos poli no saturados. 16. El proceso según la reivindicación 14, caracterizado porque la cantidad total de ácidos grasos omega-3 y omega-4 es al menos aproximadamente 20% de dichos lípidos. 17. El proceso según la reivindicación 14, caracterizado porque al menos aproximadamente 25% de dichos lípidos es ácido docosahexanóico. 18. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de *** ** , -*.**** -**- » . ¿.*?*J*. * algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, caracterizado porque dichos microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos u otros lípidos que generalmente se ha creído que requieren oxígeno para su síntesis. 19. El proceso según la reivindicación 18, caracterizado porque dichos microorganismos son capaces de producir lípidos en un nivel de oxígeno del medio de fermentación de aproximadamente menos del 3% de saturación. 20. El proceso según la reivindicación 18, caracterizado porque dichos microorganismos se desarrollan en un proceso alimentado por grupos. 21 . El proceso según la reivindicación 20, caracterizado porque comprende mantener un nivel de oxígeno de menos de aproximadamente 3% de saturación en dicho medio de fermentación durante la fase de producción de dicho proceso de fermentación. 22. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dichos microorganismos son microalgas y microorganismos similares a algas. 23. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dichos microorganismos son Stramenopiles. 24. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dichos microorganismos son del orden de Thraustochytriales. 25. El proceso según la reivindicación 1 , caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de Thraustochytrium, Schizochytrium, y mezclas de los mismos. - -*j** ítr*************** ******* ***. ****- t**?ff-f**l*?*??tMU?***. J^t. 26. Un proceso para desarrollar microorganismos eucarióticos capaces de producir al menos aproximadamente 20% de su biomasa como lípidos, dicho proceso comprendiendo agregar a un medio de fermentación que comprende dichos microorganismos una fuente de carbono y una fuente de nutriente limitante a una velocidad suficiente para incrementar la densidad de la biomasa de dicho medio de fermentación a al menos aproximadamente 100 g/L, en donde dicho proceso produce al menos una velocidad promedio de aproximadamente 0.5 g/L/hr de lípidos, y en donde al menos aproximadamente el 1 5% de los lípidos totales producidos por dichos microorganismos son lípidos poli no saturados. 27. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dicho proceso comprende además: (a) una etapa que incrementa la densidad de la biomasa, en donde el nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación es al menos aproximadamente 4%; y (b) una etapa de producción de lípido elevada, en donde el nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación es menor a aproximadamente 1 %. 28. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dicha fuente de carbono es una fuente de carbono sin alcohol. 29. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante se selecciona del grupo que consiste de fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, fuentes de fosfato, fuentes de vitamina (tales como fuentes de vitamina B?2, fuentes de pantotenato, fuentes de tiamina), fuentes de metal de indicio (tales como fuentes de zinc, fuentes de cobre, fuentes de cobalto, fuentes de níquel, fuentes de hierro, fuentes de manganeso, fuentes de molibdeno), y fuentes de metal principales (tales como fuentes de magnesio, fuentes de calcio, fuentes de sodio, fuentes de potasio), fuentes de sílice y mezclas de los mismos. 30. El proceso según la reivindicación 29, caracterizado porque dichas fuentes de metal de indicio y fuentes de metal principales se seleccionan del grupo que consiste de sulfato y sales de cloruro de estos metales (tales como MgSO4»7H2O; MnCI2«4H2O; ZnSO4«7H2O; CoCI2»6H2O; Na2MoO4«2H2O; CuSO4»5H2O; NiSO »6H2O; FeSO »7H2O; CaCI2; K2SO4; KCl y Na2SO4) y mezclas de los mismos. 31 . El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante comprende una fuente de nitrógeno. 32. El proceso según la reivindicación 31 , caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende una sal de amonio inorgánica. 33. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, caracterizado porque dichos microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos u otros lípidos que generalmente se ha creído que requieren oxígeno para su síntesis. 34. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dichos microorganismos son Stramenopiles. 35. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dichos microorganismos son microalgas. 36. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dichos microorganismos son del orden de Thraustochytriales. 37. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de Thraustochytrium, Schizochytrium, y mezclas de los mismos. 38. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque la cantidad total de ácidos grasos omega-3 y omega-6 es al menos aproximadamente 20% de dichos lípidos. 39. El proceso según la reivindicación 26, caracterizado porque al menos aproximadamente 25% de dichos lípidos es ácido docosahexanóico. 40. Un proceso para desarrollar microorganismos eucarióticos capaces de agregar a un medio de fermentación que comprende dichos microorganismos una fuente de carbono y una fuente de nutriente limitante a una velocidad suficiente para incrementar la densidad de la biomasa de dicho medio de fermentación a al menos aproximadamente 100 g/L, en donde dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, y en donde dichos microorganismos son capaces de producir al menos aproximadamente 20% de su biomasa como lípidos que comprenden algunos ácidos grasos polienóicos. 41 . El proceso según la reivindicación 40, caracterizado A* t J *t*láaá? á .&?*-***.*.***. *.,*?.**** *..* *..*„***,. ^^.^A*.**.***. ***..^.,.** ... ^„ **^?*? ,.* * porque dicho proceso produce lípidos microbiales a una velocidad promedio de al menos aproximadamente 0.5 g/L/hr. 42. El proceso según la reivindicación 41 , caracterizado porque más de aproximadamente 15% de dichos lípidos son lípidos poli no saturados. 43. El proceso según la reivindicación 41 , caracterizado porque la cantidad total de ácidos grasos poli no saturados omega-3 y omega-6 es al menos aproximadamente 20% de dichos lípidos. 44. El proceso según la reivindicación 41 , caracterizado porque al menos aproximadamente 25% de dichos lípidos es ácido docosahexanóico. 45. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dicho proceso produce en promedio al menos aproximadamente 0.2 g/L/hr de ácido docosahexanóico. 46. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dicha fuente de carbono no es un alcohol. 47. El proceso según la reivindicación 46, caracterizado porque dicha fuente de carbono es un carbohidrato. 48. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante se selecciona del grupo que consiste de fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, fuentes de fosfato, fuentes de vitamina (tales como fuentes de vitamina B12, fuentes de pantotenato, fuentes de tiamina), fuentes de metal de indicio (tales como fuentes de zinc, fuentes de cobre, fuentes de cobalto, fuentes de níquel, fuentes de hierro, fuentes de manganeso, fuentes de molibdeno) , y t * ?.??**?.A??l¿****. .*.é,-». ¿¡*.««, **r ftM tft. ,.^-...-^.^«^..1..^^^^»- ^- ^^.... -. „.. . . . ¡ t * i i mi» fuentes de metal principales (tales como fuentes de magnesio, fuentes de calcio, fuentes de sodio, fuentes de potasio), fuentes de sílice y mezclas de los mismos. 49. El proceso según la reivindicación 48, caracterizado porque dichas fuentes de metal de indicio y fuentes de metal principales se seleccionan del grupo que consiste de sulfato y sales de cloruro de estos metales (tales como MgSO4«7H2O; MnCI2«4H2O; ZnSO4«7H2O; CoCI2»6H2O; Na2MoO4«2H2O; CuSO4»5H2O; NiSO4«6H2O; FeSO4«7H2O; CaCI2; K2SO4; KCl y Na2SO ) y mezclas de los mismos. 50. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante comprende una fuente de nitrógeno. 51 . El proceso según la reivindicación 50, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende una sal de amonio inorgánica. 52. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende hidróxido de amonio. 53. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, en donde dichos microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos y otros lípidos que generalmente se ha creído que requieren oxígeno para su síntesis. 54. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dichos microorganismos son microalgas y microorganismos similares a algas. 55. El proceso según la reivindicación 40, caracterizado porque dichos microorganismos son Stramenopiles. 56. Un proceso para producir lípidos microbiales eucarióticos que comprende: (a) desarrollar microorganismos eucarióticos en un medio de fermentación para incrementar la densidad de biomasa de dicho medio de fermentación a al menos aproximadamente 100 g/L. (b) proporcionar condiciones de fermentación suficientes para permitir que dichos microorganismos produzcan dichos lípidos; y (c) recuperar dichos lípidos, en donde más de aproximadamente 15% de dichos lípidos son lípidos poli no saturados. 57. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque un nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante dicha etapa que desarrolla el microorganismos es más elevado que el nivel de oxígeno disuelto en el medio de fermentación durante dicha etapa que produce el lípido. 58. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque el nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante la etapa que desarrolla el microorganismo es al menos aproximadamente 4%. 59. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque el nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante la etapa que produce el lípido es menor a aproximadamente 1 %. 60. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, en donde dichos microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos u otros lípidos que generalmente se ha creído que requieren oxígeno para su síntesis. 61 . El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dichos microorganismos son Stramenopiles. 62. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dichos microorganismos son microalgas y microorganismos similares a algas. 63. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dichos microorganismos son del orden de Thraustochytriales. 64. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de Thraustochytrium, Schizochytrium, y mezclas de los mismos. 65. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque la cantidad total de ácidos grasos omega-3 y omega-6 es al menos aproximadamente 20% de dichos lípidos microbiales. 66. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque al menos aproximadamente 25% de dichos lípidos microbiales es ácido docosahexanóico. 67. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dicho proceso produce ácido docosahexanóico a una velocidad promedio de al menos aproximadamente 0.2 g/L/hr. 68. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado Hl'Tl r T fl?|F*«t~--**—.. *...*.. **** **** mmh» porque dicha etapa de recuperación de lípido comprende: (d) remover agua de dicho medio de fermentación para proporcionar microorganismos secos; y (e) aislar dichos iípidos de dichos microorganismos secos. 69. El proceso según la reivindicación 68, caracterizado porque dicha etapa de retiro de agua comprende contactar dicho medio de fermentación directamente en un secador de tambo sin centrifugación anterior. 70. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dicha etapa de recuperación de lípido comprende: (d) tratar el caldo de fermentación para permeabilizar, lisar o romper las células microbiales; y (e) recuperar los lípidos del caldo de fermentación por separación de gravedad, con o sin la ayuda de un agente para romper la emulsión de lípido/agua. 71 . El proceso según la reivindicación 70, caracterizado porque dichas células microbiales se tratan en la etapa (d) en un fermentador o un envase similar. 72. El proceso según la reivindicación 70, caracterizado porque dicha separación de gravedad comprende centrifugación. 73. El proceso según la reivindicación 56, caracterizado porque dicha etapa que desarrolla el microorganismo comprende agregar una fuente de carbono y una fuente de nutriente limitante. 74. El proceso según la reivindicación 73, caracterizado porque dicha fuente de carbono no es alcohol. 75. El proceso según la reivindicación 74, caracterizado porque dicha fuente de carbono comprende un carbohidrato. 76. El proceso según la reivindicación 73, caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante se selecciona del grupo que consiste de fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, fuentes de fosfato, fuentes de vitamina (tales como fuentes de vitamina B12, fuentes de pantotenato, fuentes de tiamina), fuentes de metal de indicio (tales como fuentes de zinc, fuentes de cobre, fuentes de cobalto, fuentes de níquel , fuentes de hierro, fuentes de manganeso, fuentes de molibdeno), y fuentes de metal principales (tales como fuentes de magnesio, fuentes de calcio, fuentes de sodio, fuentes de potasio), fuentes de sílice y mezclas de los mismos. 77. El proceso según la reivindicación 76, caracterizado porque dichas fuentes de metal de indicio y fuentes de metal principales se seleccionan del grupo que consiste de sulfato y sales de cloruro de estos metales (tales como MgSO4»7H2O; MnCI2»4H2O; ZnSO4»7H2O; CoCI2-6H2O; Na2MoO4»2H2O; CuSO4«5H2O; NiSO4«6H2O; FeSO4»7H2O; CaCI2; K2SO4; KCl y Na2SO4) y mezclas de los mismos. 78. El proceso según la reivindicación 73, caracterizado porque dicha fuente nutriente limitante comprende una fuente de nitrógeno. 79. El proceso según la reivindicación 78, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende una sal de amonio inorgánica. 80. El proceso según la reivindicación 78, caracterizado hH .i il Éi J iJÉii?É Üli Hi r ir l|-|n*i-tl??lT lílirli - >*- «- -* * porque dicha fuente de nitrógeno comprende hidróxido de amonio. 81 . Un proceso para producir lípidos microbiales eucarióticos que comprende: (a) agregar una fuente de carbono sin alcohol y una fuente de nutriente limitante a un medio de fermentación que comprende dichos microorganismos; (b) proporcionar condiciones suficientes para que dichos microorganismos produzcan dichos lípidos microbiales; y (c) recuperar dichos lípidos microbiales. 82. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque el nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante una etapa que incrementa la densidad de la biomasa es más elevado que el nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante una etapa que produce lípido. 83. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque el nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante una etapa que incrementa la densidad de la biomasa es al menos aproximadamente 4%. 84. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque el nivel de oxígeno disuelto en dicho medio de fermentación durante una etapa que produce lípido es aproximadamente 1 % o menos. 85. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos. 86. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos, en donde dichos microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos u otros lípidos que se ha creído que requieren oxígeno para su síntesis. 87. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dichos microorganismos son Stramenopiles. 88. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dichos microorganismos son microalgas y microorganismos similares a algas. 89. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dichos microorganismos son del orden de Thraustochytriales. 90. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de Thraustochytríum, Schizochytrium, y mezclas de los mismos. 91 . El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dicho proceso produce dichos lípidos microbiales a una velocidad promedio de al menos aproximadamente 0.5 g/L/hr. 92. El proceso según la reivindicación 91 , caracterizado porque la cantidad total de ácidos grasos omega-3 y omega-6 es al menos aproximadamente 20% de dichos lípidos microbiales. 93. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque al menos aproximadamente 25% de dichos lípidos es ácido docosahexanóico. 94. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dicho proceso produce ácido docosahexanóico a una velocidad promedio de al menos aproximadamente 0.2 g/L/hr. 95. El proceso según la reivindicación 58, caracterizado porque dicha etapa de recuperación de lípido comprende: (d) remover agua de dicho medio de fermentación para proporcionar microorganismos secos; y (e) aislar dichos lípidos de dichos microorganismos secos. 96. El proceso según la reivindicación 95, caracterizado porque dicha etapa de retiro de agua comprende evaporar agua de dicho medio de fermentación sin centrifugación anterior. 97. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dicha etapa de recuperación de lípido comprende: (d) tratar el caldo de fermentación para permeabilizar, lisar o romper las células microbiales; y (e) recuperar los lípidos del caldo de fermentación por separación de gravedad, con o sin la ayuda de un agente para ayudar a romper la emulsión de lípido/agua. 98. El proceso según la reivindicación 97, caracterizado porque dichas células microbiales se tratan en la etapa (d) en un fermentador o un envase similar. 99. El proceso según la reivindicación 97, caracterizado porque dicha separación de gravedad comprende centrifugación. 100. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dicha fuente de carbono sin alcohol comprende un carbohidrato. 101 . El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante se selecciona del grupo que consiste de fuentes de nitrógeno, fuentes de carbono, fuentes de fosfato, fuentes de vitamina (tales como fuentes de vitamina B12, fuentes de pantotenato, fuentes de tiamina), fuentes de metal de indicio (tales como fuentes de zinc, fuentes de cobre, fuentes de cobalto, fuentes de níquel, fuentes de hierro, fuentes de manganeso, fuentes de molibdeno), y fuentes de metal principales (tales como fuentes de magnesio, fuentes de calcio, fuentes de sodio, fuentes de potasio), fuentes de sílice y mezclas de los mismos. 102. El proceso según la reivindicación 101 , caracterizado porque dichas fuentes de metal de indicio y fuentes de metal principales se seleccionan del grupo que consiste de sulfato y sales de cloruro de estos metales (tales como MgSO4«7H2O; MnCI2«4H2O; ZnSO4»7H2O; CoCI2«6H2O; Na2MoO4.2H2O; CuSO4»5H2O; NiSO4«6H2O; FeSO4«7H2O; CaCI2; K2SO4; KCl y Na2SO4) y mezclas de los mismos. 103. El proceso según la reivindicación 81 , caracterizado porque dicha fuente de nutriente limitante comprende una fuente de nitrógeno. 104. El proceso según la reivindicación 103, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende una sal de amonio inorgánica. 105. El proceso según la reivindicación 103, caracterizado porque dicha fuente de nitrógeno comprende hidróxido de amonio. 106. Un proceso para producir lípidos microbiales eucarióticos que comprende: (a) agregar una fuente de carbono y una fuente de nutriente limitante a un medio de fermentación que comprende microorganismos eucarióticos y proporcionar condiciones suficientes para mantener un nivel de oxígeno disuelvo de al menos aproximadamente 4% en dicho medio de fermentación para producir una densidad de biomasa de al menos aproximadamente 100 g/L; (b) proporcionar condiciones suficientes para mantener un nivel de oxígeno disuelto de aproximadamente 1 % o menos en dicho medio de fermentación y proporcionar condiciones suficientes para permitir que dichos microorganismos produzcan dichos lípidos; y (c) recuperar dichos lípidos microbiales; en donde al menos aproximadamente 1 5 de dichos lípidos microbiales son lípidos poli no saturados. 107. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura), protistos, bacterias y mezclas de los mismos. 108. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de algas, hongos (incluyendo levadura) , protistos, bacterias y mezclas de los mismos, en donde dichos microorganismos son capaces de producir ácidos grasos polienóicos u otros lípidos que se ha creído que requieren oxígeno para su síntesis. 109. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichos microorganismos son Stramenopiles. 1 10. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichos microorganismos son microalgas y microorganismos similares a algas. 1 1 1 . El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichos microorganismos son del orden de Thraustochytriales. 1 12. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichos microorganismos se seleccionan del grupo que consiste de Thraustochytrium, Schizochytrium y mezclas de los mismos. 1 13. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque al menos aproximadamente 20% de dichos lípidos microbiales es ácidos grasos omega-3 y/u omega-6. 1 14. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque al menos aproximadamente 25% de dichos lípidos microbiales es ácido docosahexanóico. 1 15. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dicho proceso produce ácido docosahexanóico a una velocidad promedio de al menos aproximadamente 0.2 g/L/hr. 1 16. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque la etapa de recuperación de lípido comprende: (d) remover agua de dicho medio de fermentación para proporcionar microorganismos secos; y (e) aislar dichos lípidos de dichos microorganismos secos. 1 17. El proceso según la reivindicación 1 16, caracterizado porque la etapa de retiro de agua comprende evaporar el agua directamente de dicho medio de fermentación sin centrifugación anterior. 1 18. Et proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque la etapa de recuperación de lípido comprende: (d) tratar el caldo de fermentación para permeabilizar, lisar o romper las células microbiales; y (e) recuperar los lípidos del caldo de fermentación por separación de gravedad, con o sin la ayuda de un agente para romper la emulsión de lípido/agua. 1 19. El proceso según la reivindicación 106, caracterizado porque dichas células microbiales se tratan en la etapa (d) en un fermentador o un envase similar. 120. El proceso según la reivindicación 1 18, caracterizado porque dicha separación de gravedad comprende centrifugación. 121 . Un meto para enriquecer el contenido de ácido graso polienóico de un microorganismo que comprende fermentar dicho microorganismo en un medio de crecimiento que tiene un nivel de oxígeno disuelto de menos de 10%. 122. El proceso según la reivindicación 121 , caracterizado porque dicho nivel de oxígeno disuelto es menor a 5 por ciento. 123. El proceso según la reivindicación 121 , caracterizado porque dicho nivel de oxígeno disuelto es menor a 1 por ciento. 124. El proceso según la reivindicación 121 , caracterizado porque durante una fase de crecimiento inicial, el nivel de oxígeno disuelto es mayor a aproximadamente 10 por ciento y durante una fase de producción subsecuente el nivel de oxígeno disuelto es menor a 10 por ItJ-?^?j^L?jiáik*..*** .** *****. .*,^.^***?.** *.^.* n^An. **—*.* .-***^*** ciento. 125. El proceso según la reivindicación 121 , caracterizado porque dicho microorganismo contiene genes de sintasa de poliquetido. 126. Un proceso heterotrófico para producir productos y microorganismos que comprende: a. cultivar dichos microorganismos en un medio de crecimiento en donde dichos microorganismos comprenden genes de sintasa de poliquetido; y b. mantener el nivel de oxígeno disuelto a menos de aproximadamente 10 por ciento. 127. El proceso según la reivindicación 126, caracterizado porque dicho nivel de oxígeno disuelto es menor a aproximadamente 5 por ciento. 128. El proceso según la reivindicación 126, caracterizado porque dicho nivel de oxígeno disuelto es menor a aproximadamente 1 por ciento. 129. El proceso según la reivindicación 126, caracterizado porque dichos genes de sintasa de poliquetido ocurren naturalmente en dichos microorganismos. 130. El proceso según la reivindicación 126, caracterizado porque dichos genes de sintasa de poliquetido se introducen genéticamente en dichos microorganismos. 131 . El proceso según la reivindicación 126, caracterizado porque durante una fase de crecimiento inicial, el nivel de oxígeno disuelto es mayor a aproximadamente 10 por ciento y durante una fase de producción subsecuente el nivel de oxígeno disuelto es menor a aproximadamente 10 por ciento.
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Families Citing this family (181)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6451567B1 (en) * 1988-09-07 2002-09-17 Omegatech, Inc. Fermentation process for producing long chain omega-3 fatty acids with euryhaline microorganisms
US20060094089A1 (en) * 1988-09-07 2006-05-04 Martek Biosciences Corporation Process for the heterotrophic production of microbial products with high concentrations of omega-3 highly unsaturated fatty acids
US5340742A (en) * 1988-09-07 1994-08-23 Omegatech Inc. Process for growing thraustochytrium and schizochytrium using non-chloride salts to produce a microfloral biomass having omega-3-highly unsaturated fatty acids
DE69637953D1 (de) 1995-04-17 2009-07-30 Nat Inst Of Advanced Ind Scien Hoch ungesättigte fettsäurenproduzierende mikroorganismen und verfahren zur herstellung von hoch ungesättigten fettsäuren durch verwendung dieser mikroorganismen
US20080175953A1 (en) * 1995-06-07 2008-07-24 Martek Biosciences Corporation Process for the Heterotrophic Production of Microbial Products with High Concentrations of Omega-3 Highly Unsaturated Fatty Acids
DE60130737T3 (de) * 2000-01-28 2016-01-14 Dsm Ip Assets B.V. Verstärkte Produktion von Lipiden enthaltend mehrfachungesättigte Fettsäuren durch hochdichte Kulturen von eukariotischen Mikroben in Gärvorrichtungen
USRE45764E1 (en) * 2001-09-14 2015-10-20 Arkray, Inc. Concentration measuring method, concentration test instrument, and concentration measuring apparatus
US7560123B2 (en) * 2004-08-12 2009-07-14 Everett Laboratories, Inc. Compositions and methods for nutrition supplementation
CA2484334C (en) * 2002-05-03 2013-01-22 Martek Biosciences Corporation High-quality lipids and methods for producing by enzymatic liberation from biomass
US6814983B2 (en) * 2002-12-10 2004-11-09 Everett Laboratories, Inc. Compositions and methods for nutrition supplementation
US8617617B2 (en) * 2002-12-10 2013-12-31 Everett Laboratories, Inc. Methods and kits for co-administration of nutritional supplements
US20050019880A1 (en) * 2003-03-31 2005-01-27 Council Of Scientific And Industrial Research Method of enhancing levels of polyunsaturated fatty acids in thraustochytrid protists
JP2007502860A (ja) * 2003-04-24 2007-02-15 ヴァンダービルト ユニバースィティ 昆虫を防除するための組成物及び方法
US20060263403A1 (en) * 2003-04-24 2006-11-23 Essam Enan Compositions and methods for controlling insects involving the tyramine receptor
US7622269B2 (en) * 2004-03-19 2009-11-24 Tyratech, Inc. Methods of screening tyramine- and octopamine-expressing cells for compounds and compositions having potential insect control activity
AU2003902794A0 (en) * 2003-06-03 2003-06-19 Agresearch Limited Improvements in grass endophytes
US7267976B2 (en) * 2003-07-02 2007-09-11 E.I. Du Pont De Nemours And Company Acyltransferases for alteration of polyunsaturated fatty acids and oil content in oleaginous yeasts
CN1845986A (zh) * 2003-09-01 2006-10-11 诺维信公司 用于增加来自海洋微生物的生物质和/或生物质成分的产率的方法
MX338455B (es) 2003-10-02 2016-04-18 Dsm Ip Assets Bv Produccion de altos niveles de dha en microalgas usando cantidades modificadas de cloruro y potasio.
AU2004290051A1 (en) * 2003-11-12 2005-05-26 E.I. Dupont De Nemours And Company Delta-15 desaturases suitable for altering levels of polyunsaturated fatty acids in oilseed plants and oleaginous yeast
BRPI0418239B1 (pt) * 2003-12-30 2013-10-01 processo de desaeraÇço
US8101587B2 (en) 2004-08-12 2012-01-24 Everett Laboratories, Inc. Kits for nutrition supplementation
US8241868B2 (en) 2005-02-08 2012-08-14 Nippon Suisan Kaisha, Ltd. Production of polyunsaturated fatty acids using cell treatment method
JP4849806B2 (ja) * 2005-02-08 2012-01-11 日本水産株式会社 新規な菌体処理方法を用いた高度不飽和脂肪酸の製造方法
ES2909600T3 (es) 2005-06-07 2022-05-09 Dsm Nutritional Products Ag Microorganismos eucarióticos para producir lípidos y antioxidantes
EP1903883A4 (en) 2005-07-01 2010-06-23 Martek Biosciences Corp OIL PRODUCT CONTAINING MULTIPLE UNSATURATED FATTY ACIDS AND ITS USES AND MANUFACTURING
US8177262B2 (en) * 2005-07-28 2012-05-15 Hydril Company Lp Mid-seal for expandable connections
WO2007074479A1 (en) * 2005-12-29 2007-07-05 Abl Biotechnologies Ltd Novel strain of schizochytrium limacinum useful in the production of lipids and extracellular polysaccharides and process thereof
EP2043620B1 (en) 2006-06-27 2017-05-03 Tyratech, Inc. Compositions for use in treating a parasitic infections in a mammalian subject
BRPI0714350B1 (pt) * 2006-07-17 2017-03-07 Tyratech Inc composições e métodos para controle de insentos
US9023616B2 (en) 2006-08-01 2015-05-05 Dsm Nutritional Products Ag Oil producing microbes and method of modification thereof
US9637714B2 (en) * 2006-12-28 2017-05-02 Colorado State University Research Foundation Diffuse light extended surface area water-supported photobioreactor
MX2009007637A (es) * 2007-01-16 2009-09-28 Tyratech Inc Composiciones y metodos para control de pestes.
CA2702247A1 (en) * 2007-06-14 2008-12-18 Nickolaos Mitropoulos Algae growth for biofuels
WO2008155410A1 (en) * 2007-06-21 2008-12-24 Novozymes A/S Production of lipids containing poly-unsaturated fatty acids
MX2010000263A (es) * 2007-06-29 2010-03-11 Martek Biosciences Corp Produccion y purificacion de esteres de acidos grasos poliinsaturados.
GB0713121D0 (en) * 2007-07-06 2007-08-15 Univ Keele Refrigerated gas equilibration device
WO2009035551A1 (en) * 2007-09-12 2009-03-19 Martek Biosciences Corporation Biological oils and production and uses thereof
ITMI20072343A1 (it) * 2007-12-14 2009-06-15 Eni Spa Processo per la produzione di biomassa algale ad alto contenuto lipidico
US7989195B2 (en) * 2008-02-20 2011-08-02 Washington State University Research Foundation Heterotrophic algal high cell density production method and system
ES2326022B1 (es) 2008-03-25 2010-06-07 Neuron Biopharma, S.A. Procedimiento mejorado para la produccion de biodiesel.
MX2010011065A (es) * 2008-04-09 2010-12-06 Solazyme Inc Modificacion química directa de biomasa microbiana y aceites microbianos.
JP5171422B2 (ja) * 2008-06-19 2013-03-27 ルネサスエレクトロニクス株式会社 感光性組成物、これを用いたパターン形成方法、半導体素子の製造方法
US20100050502A1 (en) * 2008-08-21 2010-03-04 LiveFuels, Inc. Systems and methods for hydrothermal conversion of algae into biofuel
US20100236137A1 (en) * 2008-09-23 2010-09-23 LiveFuels, Inc. Systems and methods for producing eicosapentaenoic acid and docosahexaenoic acid from algae
EP2342347A1 (en) * 2008-09-23 2011-07-13 Livefuels, Inc Systems and methods for producing biofuels from algae
US20100077654A1 (en) * 2008-09-23 2010-04-01 LiveFuels, Inc. Systems and methods for producing biofuels from algae
MX339664B (es) 2008-10-14 2016-06-03 Solazyme Inc Composiciones alimenticias a partir de biomasa de microalgas.
WO2010120923A1 (en) 2009-04-14 2010-10-21 Solazyme, Inc. Novel microalgal food compositions
US8809037B2 (en) 2008-10-24 2014-08-19 Bioprocessh20 Llc Systems, apparatuses and methods for treating wastewater
US20110239318A1 (en) * 2008-11-18 2011-09-29 LiveFuels, Inc. Methods for producing fish with high lipid content
JP2012512655A (ja) * 2008-12-19 2012-06-07 アルファ−ジェイ リサーチ リミテッド パートナーシップ 細胞増殖および藻類生成物生成の切り離しを通じた藻類生成物生成の最適化
WO2010097809A2 (en) * 2009-02-25 2010-09-02 V.B. Medicare Pvt. Ltd. Improved methods for fermentative production of docosahexaenoic acid
US8207363B2 (en) * 2009-03-19 2012-06-26 Martek Biosciences Corporation Thraustochytrids, fatty acid compositions, and methods of making and uses thereof
US8753851B2 (en) 2009-04-17 2014-06-17 LiveFuels, Inc. Systems and methods for culturing algae with bivalves
EP2427420A1 (en) 2009-05-04 2012-03-14 Primafuel, Inc. Improved recovery of desired co-products from fermentation stillage streams
CN101899481A (zh) * 2009-05-25 2010-12-01 华盛顿州立大学 异养海藻高密度生产的方法和系统
KR101856055B1 (ko) 2009-09-18 2018-05-09 파이코일 바이오테크놀로지 인터내셔널, 아이엔씨. 조절되는 조명을 사용하는 미세조류 발효
CA2787344C (en) 2010-01-19 2018-03-20 Dsm Ip Assets B.V. Eicosapentaenoic acid-producing microorganisms, fatty acid compositions, and methods of making and uses thereof
BR112012022339A2 (pt) 2010-03-11 2015-10-06 Bp Biofuels Uk Ltd óleos biológicos ou biocombustíveis e organismo isolado e método para produzir os mesmos
CA2792904A1 (en) 2010-03-12 2011-09-15 Solix Biosystems, Inc. Systems and methods for positioning flexible floating photobioreactors
KR101147450B1 (ko) 2010-05-04 2012-05-21 한국생명공학연구원 신규 유지성 미세조류 ｋｒｓ１０１ 균주 및 이를 이용한 바이오오일의 제조방법
CN103025862B (zh) * 2010-05-04 2015-02-11 韩国生命工学研究院 新型破囊壶菌类微藻及用其生产生物油的方法
EP3617318A1 (en) 2010-06-01 2020-03-04 DSM IP Assets B.V. Extraction of lipid from cells and products therefrom
US9023625B2 (en) 2010-06-14 2015-05-05 Io-Mega Holding Corporation Methods for production of algae derived oils
US10479969B2 (en) 2010-10-11 2019-11-19 Phycoil Biotechnology International. Inc. Utilization of wastewater for microalgal cultivation
CN102485898A (zh) * 2010-12-02 2012-06-06 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 微生物发酵生产脂质的方法
WO2012109375A2 (en) * 2011-02-08 2012-08-16 Phycal Inc. Methods for improved mixed trophic algal culture
CN103649313B (zh) 2011-03-07 2017-10-24 Dsm营养产品股份公司 工程化破囊壶菌属微生物
US9487716B2 (en) 2011-05-06 2016-11-08 LiveFuels, Inc. Sourcing phosphorus and other nutrients from the ocean via ocean thermal energy conversion systems
MX349840B (es) 2011-06-23 2017-08-16 Rho Renewables Inc Sistemas de produccion recombinante para moleculas aromaticas.
US8183227B1 (en) 2011-07-07 2012-05-22 Chemo S. A. France Compositions, kits and methods for nutrition supplementation
UA112080C2 (uk) * 2011-07-13 2016-07-25 Олтек, Інк. Спосіб одержання водоростевої біомаси і її використання
DK3050972T3 (da) * 2011-07-21 2021-02-08 Dsm Ip Assets Bv Fremgangsmåder til fremstilling af eicosapentaensyre i thraustochytrider
CN108771240A (zh) 2011-07-21 2018-11-09 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 脂肪酸组合物
WO2013032333A1 (en) * 2011-09-01 2013-03-07 Algae Biotech S.L. Oral dosage units containing astaxanthin, phospholipids and omega-3 fatty acids
US8168611B1 (en) 2011-09-29 2012-05-01 Chemo S.A. France Compositions, kits and methods for nutrition supplementation
CA2869020A1 (en) 2012-04-09 2013-10-17 BP Biofuels UK Limited Low polysaccharide microorganisms for production of biofuels and other renewable materials
US10100338B2 (en) * 2012-05-22 2018-10-16 Ineos Bio S.A. Method of operation of a syngas fermentation process
RU2539766C2 (ru) * 2012-08-03 2015-01-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) ШТАММ Arthrospira platensis (Nordst.) Geitl. rsemsu T/05-117 - ПРОДУЦЕНТ ЛИПИДОСОДЕРЖАЩЕЙ БИОМАССЫ
CN102864111B (zh) * 2012-10-10 2013-07-17 江南大学 一株产二十二碳六烯酸的裂殖壶菌菌株
NZ707192A (en) 2012-10-17 2019-02-22 Solazyme Roquette Nutritionals Llc Microalgal flour granules and process for preparation thereof
EP2724625A1 (en) 2012-10-26 2014-04-30 Roquette Freres Microalgal flour granules and process for preparation thereof
US9394505B2 (en) 2012-12-04 2016-07-19 Flint Hills Resources, Lp Recovery of co-products from fermentation stillage streams
ES2762618T3 (es) 2013-01-18 2020-05-25 Kyowa Hakko Bio Co Ltd Microorganismos que producen ácido docosahexaenoico y utilización de los mismos
EP2762009A1 (de) 2013-02-05 2014-08-06 Evonik Industries AG Verbesserung der Bioverfügbarkeit von Wertstoffen aus Mikroorganismen
DE102013201978A1 (de) 2013-02-07 2014-08-07 Evonik Industries Ag Verbesserte Bioverfügbarkeit von Wertstoffen aus Mikroorganismen
EP2762008A1 (de) 2013-02-05 2014-08-06 Evonik Industries AG Verbesserung der Bioverfügbarkeit von Wertstoffen aus Mikroorganismen durch Verwendung eines Rotor-Stator Systems für den Zellaufschluss
EP2953480B1 (de) 2013-02-05 2020-06-03 Evonik Operations GmbH Verbesserung der bioverfügbarkeit von wertstoffen aus mikroorganismen
WO2014140934A2 (en) * 2013-03-11 2014-09-18 Life Science Nutrition As Natural lipids containing non-oxidizable fatty acids
DK2970926T3 (en) 2013-03-13 2018-04-16 Dsm Nutritional Products Ag GENMANIPULATION OF MICROorganisms
EP2777400A1 (en) 2013-03-15 2014-09-17 Roquette Freres Microalgal flour granules and process for preparation thereof
WO2014154787A2 (fr) 2013-03-29 2014-10-02 Roquette Freres Procédé d'enrichissement en protéines de la biomasse de microalgues
EP2826384A1 (de) 2013-07-16 2015-01-21 Evonik Industries AG Verfahren zur Trocknung von Biomasse
FR3008581B1 (fr) * 2013-07-19 2016-11-04 Roquette Freres Farine de microalgues riches en lipides et procede de preparation
MX2016004970A (es) 2013-10-18 2016-07-11 Roquette Freres Procedimiento para texturizar una biomasa de microalgas.
EP2938718B1 (en) 2013-11-12 2017-03-15 Makam, Roshan Viswanath A process of production and extra-cellular secretion of lipids
KR101541521B1 (ko) 2013-11-28 2015-08-03 롯데케미칼 주식회사 미세조류를 이용한 도코사헥사엔산 생산방법
EP3082459B1 (fr) 2013-11-29 2019-01-30 Corbion Biotech, Inc. Granules de farine de biomasse de microalgues riches en protéines et leur procédé de préparation
CN105793433A (zh) 2013-11-29 2016-07-20 罗盖特兄弟公司 用于富集具有类胡萝卜素并且具有蛋白质的微藻生物质的方法
FR3015516B1 (fr) * 2013-12-19 2016-01-22 Roquette Freres Procede d'enrichissement en dha de la biomasse de microalgues du genre thraustochytrium
CN105960235B (zh) 2013-12-20 2021-01-08 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 用于从微生物细胞获得微生物油的方法
KR102435268B1 (ko) 2013-12-20 2022-08-22 디에스엠 뉴트리셔널 프라덕츠 아게 미생물로부터 오일을 회수하는 방법
CA2934491C (en) 2013-12-20 2023-09-26 Dsm Ip Assets B.V. Processes for obtaining microbial oil from microbial cells
KR20240001258A (ko) 2013-12-20 2024-01-03 마라 리뉴어블즈 코퍼레이션 미생물로부터 오일을 회수하는 방법
JP2017504318A (ja) 2013-12-20 2017-02-09 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー．ブイ． 微生物細胞から微生物油を入手するための方法
US11124736B2 (en) 2013-12-20 2021-09-21 Dsm Ip Assets B.V. Processes for obtaining microbial oil from microbial cells
EP3097201B1 (fr) 2014-01-20 2018-11-28 Corbion Biotech, Inc. Procédé d'enrichissement en protéines de la biomasse de microalgues
ES2795325T3 (es) * 2014-02-28 2020-11-23 Delft Advanced Biofuels B V Procedimiento para la recuperación de lípidos o hidrocarburos
BR112017002791B1 (pt) 2014-05-22 2024-03-05 MARA Renewables Corporation Método para a produção de óleo em micro-organismos
US20150352034A1 (en) 2014-06-08 2015-12-10 Solazyme, Inc. Personal Care Products Containing Microalgae or Extracts Thereof
WO2016004380A2 (en) * 2014-07-03 2016-01-07 Montana State University Acidophilic fusarium oxysporum strains, methods of their production and methods of their use
US11324234B2 (en) 2014-10-02 2022-05-10 Evonik Operations Gmbh Method for raising animals
CA2958457C (en) 2014-10-02 2022-10-25 Evonik Industries Ag Process for producing a pufa-containing biomass which has high cell stability
DK180016B1 (da) 2014-10-02 2020-01-22 Evonik Degussa Gmbh Feedstuff of high abrasion resistance and good stability in water, containing PUFAs
CA2958460C (en) 2014-10-02 2022-09-13 Evonik Industries Ag Process for producing a pufa-containing feedstuff by extruding a pufa-containing biomass
KR102501031B1 (ko) 2014-10-16 2023-02-16 마라 리뉴어블즈 코퍼레이션 반연속적 배양 방법
CA2960450C (en) * 2014-10-16 2023-02-14 MARA Renewables Corporation Repeated fed-batch culture methods
US10570427B2 (en) * 2014-10-31 2020-02-25 Lanzatech New Zealand Limited Fermentation process for the production of lipids
EP3225691B1 (en) * 2014-11-28 2020-10-28 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing isoprenoid compound
FR3030191B1 (fr) 2014-12-18 2018-03-23 Corbion Biotech, Inc. Composition pour produit frit allege en matiere grasse et procede de fabrication
US9890402B2 (en) 2015-01-24 2018-02-13 Indian Oil Corporation Limited Thraustochytrid based process for treating waste effluents
FR3031984B1 (fr) * 2015-01-27 2019-05-24 Roquette Freres Procede d'enrichissement de la biomasse de microalgues du genre traustochytrium en dha et en acides amines arg et glu
EP3274430B1 (en) 2015-03-24 2022-08-03 Corbion Biotech, Inc. Microalgal compositions and uses thereof
AR104042A1 (es) * 2015-03-26 2017-06-21 Mara Renewables Corp Producción de alta densidad de biomasa y aceite utilizando glicerol en bruto
CA2991707C (en) 2015-07-13 2023-08-01 MARA Renewables Corporation Enhancing microbial metabolism of c5 organic carbon
CN104974944B (zh) * 2015-07-15 2018-05-25 南京工业大学 一种产dha的裂殖壶菌基因工程菌及其构建方法和应用
ITUB20152958A1 (it) 2015-08-06 2017-02-06 Eni Spa Metodo per concentrare una sospensione cellulare comprendente una biomassa mucillaginosa di lieviti oleaginosi.
CN105018539B (zh) * 2015-08-24 2019-02-12 青岛旭能生物工程有限责任公司 一种培养裂殖壶菌高产dha的方法
CN105002227B (zh) * 2015-08-24 2018-09-07 青岛旭能生物工程有限责任公司 一种通过流加策略提高摇瓶发酵裂殖壶菌生产二十二碳六烯酸的方法
CN105420122A (zh) * 2015-12-23 2016-03-23 通威股份有限公司 可高密度培养的裂殖壶菌及其生产富含dha的油脂的方法
WO2017131188A1 (ja) * 2016-01-28 2017-08-03 日本水産株式会社 高度不飽和脂肪酸を含む油脂の製造方法
FI3423561T4 (fi) 2016-03-01 2024-05-03 The Fynder Group Inc Rihmamaisia sienibiomattoja, niiden valmistusmenetelmiä ja niiden käyttömenetelmiä
US10851395B2 (en) 2016-06-10 2020-12-01 MARA Renewables Corporation Method of making lipids with improved cold flow properties
JP6998935B2 (ja) 2016-07-13 2022-01-18 エボニック オペレーションズ ゲーエムベーハー 溶解された脂質含有バイオマスから脂質を分離する方法
CA3030471C (en) 2016-07-13 2023-06-20 Evonik Degussa Gmbh Method of separating lipids from a lysed lipids containing biomass
WO2018011275A1 (en) 2016-07-13 2018-01-18 Evonik Degussa Gmbh Method for isolating lipids from lipid-containing cells
WO2018015926A1 (en) 2016-07-20 2018-01-25 MARA Renewables Corporation A two-step fractionation method for winterizing oil.
ES2947608T3 (es) 2016-07-20 2023-08-14 Mara Renewables Corp Método de producción de aceite microbiano bruto fluido
CN106359930A (zh) * 2016-08-29 2017-02-01 界首市任寨乡天佑家庭农场 一种用于生产epa、dpa含量高的功能性牛肉饲料
WO2018122057A1 (en) 2016-12-27 2018-07-05 Evonik Degussa Gmbh Method of isolating lipids from a lipids containing biomass
ES2872009T3 (es) * 2016-12-27 2021-11-02 Evonik Degussa Gmbh Método de aislamiento de lípidos a partir de una biomasa que contiene lípidos
CN109777606B (zh) * 2016-12-30 2022-09-23 内蒙古金达威药业有限公司 一种提取dha毛油的方法
TWI661780B (zh) * 2017-02-10 2019-06-11 台原藥股份有限公司 含不飽和脂肪酸的素食組合物
AR110469A1 (es) 2017-07-12 2019-04-03 Bunge Global Innovation Llc Proceso para la extracción de aceite de biomasa de algas
US11814665B2 (en) 2017-08-17 2023-11-14 Evonik Operations Gmbh Enhanced production of lipids by limitation of at least two limiting nutrient sources
WO2019034354A1 (en) 2017-08-17 2019-02-21 Evonik Degussa Gmbh ENHANCED PRODUCTION OF LIPIDS BY LIMITING AT LEAST TWO SOURCES OF NUTRIENT LIMITING
AU2018324028B2 (en) 2017-08-30 2021-08-12 The Fynder Group, Inc. Edible composition with filamentous fungi and bioreactor system for the cultivation thereof
WO2019048327A1 (en) 2017-09-05 2019-03-14 Evonik Degussa Gmbh METHOD FOR SEPARATING LIPIDS IN A BIOMASS CONTAINING LYDE LIPIDS
EP3470502A1 (en) 2017-10-13 2019-04-17 Evonik Degussa GmbH Method of separating lipids from a lysed lipids containing biomass
WO2019121752A1 (en) 2017-12-20 2019-06-27 Evonik Degussa Gmbh Method of isolating lipids from a lipids containing biomass
EP3527664A1 (en) 2018-02-15 2019-08-21 Evonik Degussa GmbH Method of isolating lipids from a lipids containing biomass
WO2019122030A1 (en) 2017-12-22 2019-06-27 Dsm Ip Assets B.V. Method of separating lipids from a lysed lipids containing biomass
WO2019185939A1 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Use of twin-chromanols as antioxidants in oil
WO2019185910A2 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Novel use of substituted 2h-chromens and their derivatives
US11447459B2 (en) 2018-03-29 2022-09-20 Dsm Ip Assets B.V. Use of substituted chroman-6-ols with extended lipophilic side chains
WO2019185942A1 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Use of tocotrienols as antioxidants
PE20210444A1 (es) 2018-03-29 2021-03-08 Dsm Ip Assets Bv Nuevo uso de 2h-cromenos sustituidos y sus derivados
WO2019185891A1 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Novel use of substituted chroman-6-ols
EP3772975A1 (en) 2018-03-29 2021-02-17 DSM IP Assets B.V. Novel use of substituted chroman-6-ols
WO2019185889A1 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Novel use of carnosic acid
PE20211495A1 (es) 2018-03-29 2021-08-11 Dsm Ip Assets Bv Uso novedoso de cromanoles gemelos
WO2019185888A1 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Novel use of tocopherols
WO2019185941A1 (en) 2018-03-29 2019-10-03 Dsm Ip Assets B.V. Novel use of substituted chroman-6-ols with extended lipophilic side chains
CN113166090A (zh) 2018-03-29 2021-07-23 帝斯曼知识产权资产管理有限公司 在位置2具有延伸的亲脂性侧链的色满-6-醇、其制造和用途
US11976253B2 (en) 2018-05-15 2024-05-07 Evonik Operations Gmbh Method of isolating lipids from a lysed lipids containing biomass by emulsion inversion
CA3101855C (en) 2018-05-15 2023-06-20 Evonik Operations Gmbh Method of isolating lipids from a lipids containing biomass with aid of hydrophobic silica
CN109022284B (zh) * 2018-09-03 2021-05-21 杭州园泰生物科技有限公司 提高球等鞭金藻生物量以及dha产量的方法
FR3085825B1 (fr) 2018-09-14 2021-07-16 Fermentalg Huile de microorganismes riche en acide docosahexaenoique
FR3085962B1 (fr) 2018-09-14 2021-06-18 Fermentalg Procede d'extracton d'une huile riche en pufa
BR112021008842A2 (pt) 2018-11-09 2021-08-17 Evonik Operations Gmbh método para produzir uma biomassa com um teor aumentado de ácidos graxos poli-insaturados
EP3877535A1 (de) 2018-11-09 2021-09-15 Evonik Operations GmbH Verfahren zur herstellung einer leicht aufschliessbaren biomasse mit erhöhtem gehalt an polyungesättigten fettsäuren
KR102286636B1 (ko) * 2019-01-31 2021-08-05 한국생명공학연구원 로리오라이드 생산성이 높은 신규 미세조류
TW202103564A (zh) 2019-02-27 2021-02-01 美商可持續生物股份有限公司 包含絲狀真菌顆粒之食品材料及膜生物反應器設計
US11649586B2 (en) 2019-06-18 2023-05-16 The Fynder Group, Inc. Fungal textile materials and leather analogs
EP3933016A1 (en) 2020-06-30 2022-01-05 Evonik Operations GmbH Method of isolating lipids from a lipids containing biomass
TWI766669B (zh) * 2021-04-29 2022-06-01 大自然環保科技有限公司 有機液體生物醱酵槽裝置
WO2022228687A1 (en) 2021-04-29 2022-11-03 S2B Gmbh & Co. Kg Biotechnological production of terpenes
EP4180513A1 (en) 2021-11-15 2023-05-17 Indian Oil Corporation Limited An improved process for production of enriched algal biomass
EP4198136A3 (en) 2021-12-16 2023-08-30 Indian Oil Corporation Limited Methods and formulations for enhancing high value lipids
WO2023144707A1 (en) 2022-01-25 2023-08-03 Dsm Ip Assets B.V. Media refinement and nutrient feeding approaches to increase polyunsaturated fatty acid production

Family Cites Families (140)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2879162A (en) 1956-10-04 1959-03-24 Du Pont Augmenting poultry feed
US2890989A (en) 1957-07-01 1959-06-16 Ralph F Anderson Method for the production of carotenes
GB857161A (en) 1958-01-07 1960-12-29 Boots Pure Drug Co Ltd Improvements in the propagation of fungi
US3108402A (en) * 1961-03-16 1963-10-29 Grain Processing Corp Production of carotenoid pigments
US3444647A (en) 1961-08-08 1969-05-20 Masahito Takahashi Process of cultivating algae
US3142135A (en) * 1962-02-13 1964-07-28 Grain Processing Corp Production of carotenoids by the cultivation of algae
US3282794A (en) * 1963-09-19 1966-11-01 Ajinomoto Kk Method of producing citrulline by bacterial fermentation
US3296079A (en) 1963-12-09 1967-01-03 Pfizer & Co C Products sweetened without sugar and characterized by freedom from aftertaste
US3316674A (en) * 1964-09-11 1967-05-02 Yakult Honsha Kk Method of new industrial cultivation of unicellular green algae such as chlorella
GB1143405A (en) 1965-02-25 1969-02-19 Unilever Ltd Processing of foodstuffs and the like
GB1123884A (en) 1966-05-23 1968-08-14 Pfizer & Co C Animal feed compositions
FR1557635A (es) 1967-04-20 1969-02-21
US3661663A (en) 1968-08-21 1972-05-09 Owens Corning Fiberglass Corp Method of producing siliceous fiber corrosion inhibiting composites
DE1901980A1 (de) 1969-01-16 1970-09-03 Wunder Kg Heinrich Sicherheits-Skibindung mit ausschwenkbarem Andrueckbacken
US3761588A (en) * 1969-02-06 1973-09-25 Meiji Seika Kaisha Antibiotics and production thereof
US3617299A (en) 1969-09-15 1971-11-02 Abbott Lab Animal feed premix resistant to static charge and method of making same
US3647482A (en) 1970-03-04 1972-03-07 Gen Mills Inc Reduction and modification of the unpleasant aftertaste of saccharin
GB1401956A (en) 1971-09-11 1975-08-06 Marmite Ltd Growing of yeast and other microorganisms
US3924017A (en) 1972-07-28 1975-12-02 Gen Foods Corp Sweetness inducer
JPS564233B2 (es) * 1973-03-30 1981-01-29
US3908026A (en) 1973-04-19 1975-09-23 Procter & Gamble Culinary composition containing paramethoxycinnamaldehyde as a flavoring agent and sweetener
US3908028A (en) * 1973-04-19 1975-09-23 Procter & Gamble Soft drink composition containing paramethoxycinnamaldehyde as a flavoring agent and sweetner
GB1466853A (en) 1973-05-22 1977-03-09 Simon Rosedowns Ltd Extraction
US3879890A (en) * 1974-02-06 1975-04-29 Canadian Patents Dev Algal polysaccharide production
US4162324A (en) * 1975-11-21 1979-07-24 Merck & Co., Inc. Antibiotics 890A1 and 890A3
IT1109471B (it) * 1976-08-17 1985-12-16 Deral Sa Procedimento e prodotto per la conservazione e la valorizzazione di vegetali a verde e dei sotto prodotti umidi delle industrie agro alimentari
JPS5944020B2 (ja) 1978-01-27 1984-10-26 協和醗酵工業株式会社 油脂酵母による海産魚類の飼育方法
US4229544A (en) 1978-08-08 1980-10-21 Payfer Laboratories Inc. Living organism packaging
US4304794A (en) 1978-12-14 1981-12-08 Chimicasa Gmbh Artificial-sweetener composition and process of preparing and using same
US4232122A (en) 1979-01-17 1980-11-04 Z-L Limited Partnership Antioxidants, antioxidant compositions and methods of preparing and using same
JPS55111794A (en) * 1979-02-19 1980-08-28 Agency Of Ind Science & Technol Production of lipid having high linolic acid content
US4405649A (en) 1979-05-07 1983-09-20 Marvin Dudley Process for producing premium quality fish meal from whole fish
IL57712A (en) 1979-07-03 1984-02-29 Yissum Res Dev Co Cultivation of halophilic algae of the dunaliella species for the production of fuel-like product
DE3011185A1 (de) 1980-03-22 1981-10-01 Kali-Chemie Pharma Gmbh, 3000 Hannover Verfahren zur gewinnung von fuer physiologische zwecke direkt verwendbarem rin(paragraph)lecithin
GB2098065A (en) 1981-04-14 1982-11-17 Nippon Suisan Kaisha Ltd Antithrombotic compositions containing docosahexaenoic acid
US4426396A (en) 1981-06-11 1984-01-17 Union Oil Company Of California Preservation of harvested crops and animal feedstuffs
IL63734A (en) 1981-09-04 1985-07-31 Yeda Res & Dev Lipid fraction,its preparation and pharmaceutical compositions containing same
JPS58501654A (ja) 1981-10-07 1983-10-06 コモンウエルス・サイエンテイフイツク・アンド・インダストリアル・リサ−チ・オ−ガナイゼイション 藻類の採集方法
US4383038A (en) * 1981-12-10 1983-05-10 Ethyl Corporation Process for the preparation of L-proline by cultivating algae
EP0092076B1 (fr) 1982-04-16 1986-12-17 Societe Des Produits Nestle S.A. Composition lipidique destinée à l'alimentation orale, entérale ou parentérale
JPS58196068A (ja) 1982-05-12 1983-11-15 Nec Corp 電歪効果素子
JPS58213613A (ja) 1982-06-03 1983-12-12 Sumitomo Bakelite Co Ltd 球型活性炭の製造方法
US4670285A (en) 1982-08-06 1987-06-02 The University Of Toronto Innovations Foundation Infant formula
US4425396A (en) 1982-09-28 1984-01-10 The B. F. Goodrich Company Insulative panel
US4588600A (en) 1983-04-18 1986-05-13 Scm Corporation Dry premix composition for imparting a fried appearance to baked foods
JPS6087798A (ja) 1983-10-21 1985-05-17 Meiji Milk Prod Co Ltd 藻類によるエイコサペンタエン酸の生産方法
JPS60105471A (ja) 1983-11-14 1985-06-10 Nisshin Flour Milling Co Ltd 健康食品卵の生産方法
JPS60133094A (ja) 1983-12-21 1985-07-16 日清製油株式会社 高純度エイコサペンタエン酸の製造法
EP0155420B1 (en) * 1984-02-09 1988-03-23 The Agency of Industrial Science and Technology A method for the preparation of a fungal body and a lipid rich in gamma-linolenic acid therefrom
JPS61170366A (ja) 1985-01-21 1986-08-01 Nisshin Kararingu Kk 多価不飽和脂肪酸含有魚類を主成分とする食品の製造方法
IL74497A (en) 1985-03-05 1990-02-09 Proterra Ag Pharmaceutical compositions containing phenyl carbamate derivatives and certain phenyl carbamate derivatives
US4634533A (en) 1985-04-26 1987-01-06 Somerville Robert L Method of converting brines to useful products
US4792418A (en) 1985-08-14 1988-12-20 Century Laboratories, Inc. Method of extraction and purification of polyunsaturated fatty acids from natural sources
US4749522A (en) 1985-10-31 1988-06-07 Angio-Medical Corporation Supercritical fluid extraction of animal derived materials
DE3603000A1 (de) 1986-01-31 1987-08-06 Milupa Ag Neue polyensaeure-reiche fettmischung und deren verwendung bei der herstellung von saeuglingsnahrungen
JPS6340711A (ja) 1986-08-06 1988-02-22 Ngk Insulators Ltd β型窒化珪素の製造法
US4758438A (en) 1986-10-14 1988-07-19 Stroz John J Sweetener composition
US4804555A (en) 1986-10-21 1989-02-14 General Mills, Inc. Physical process for simultaneous deodorization and cholesterol reduction of fats and oils
US5064665A (en) 1987-03-23 1991-11-12 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Method of making and using a ruminant feed
US5023091A (en) 1987-03-23 1991-06-11 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Ruminant feed method of making and method of using
US4957748A (en) 1987-03-23 1990-09-18 The Board Of Regents Of The University Of Nebraska Ruminant feed, method of making and method of using
JPS63237745A (ja) 1987-03-27 1988-10-04 Harumi Okuyama α−リノレン酸系脂肪酸の含有率が高められた動物性食品の生産方法
US4764392A (en) * 1987-04-01 1988-08-16 Q.P. Corporation Margarine containing fish oil
US4918104A (en) 1987-06-16 1990-04-17 Weiss Howard S Method and composition for increasing the concentration of omega-3 polyunsaturated fatty acids in poultry and poultry eggs and poultry and eggs resulting therefrom
WO1989000606A1 (en) * 1987-07-20 1989-01-26 Maricultura, Incorporated Microorganism production of omega-3 (n-3) lipids
CA1263270A (en) 1987-08-19 1989-11-28 Bruce J. Holub Animal feed supplement
US4871551A (en) 1988-02-08 1989-10-03 Microbio Resources, Inc. Pigmentation supplements for animal feed compositions
JP2723243B2 (ja) 1988-02-25 1998-03-09 サントリー株式会社 高度不飽和脂肪酸添加動物飼料
JPH01218573A (ja) 1988-02-25 1989-08-31 Yoshio Tanaka ドナリエラ藻体含有固形状食品の製造法
US4822500A (en) 1988-02-29 1989-04-18 Texas United Chemical Corporation Saturated brine well treating fluids and additives therefore
US4874629A (en) 1988-05-02 1989-10-17 Chang Stephen S Purification of fish oil
US5985348A (en) 1995-06-07 1999-11-16 Omegatech, Inc. Milk products having high concentrations of omega-3 highly unsaturated fatty acids
US5340594A (en) 1988-09-07 1994-08-23 Omegatech Inc. Food product having high concentrations of omega-3 highly unsaturated fatty acids
US5698244A (en) * 1988-09-07 1997-12-16 Omegatech Inc. Method for raising animals having high concentrations of omega-3 highly unsaturated fatty acids
US5130242A (en) 1988-09-07 1992-07-14 Phycotech, Inc. Process for the heterotrophic production of microbial products with high concentrations of omega-3 highly unsaturated fatty acids
US20060094089A1 (en) 1988-09-07 2006-05-04 Martek Biosciences Corporation Process for the heterotrophic production of microbial products with high concentrations of omega-3 highly unsaturated fatty acids
US7033584B2 (en) 1988-09-07 2006-04-25 Omegatech, Inc. Feeding Thraustochytriales to poultry for increasing omega-3 highly unsaturated fatty acids in eggs
US6451567B1 (en) * 1988-09-07 2002-09-17 Omegatech, Inc. Fermentation process for producing long chain omega-3 fatty acids with euryhaline microorganisms
US6977167B2 (en) 1988-09-07 2005-12-20 Martek Biosciences Corporation Mixtures of omega-3 and omega-6 highly unsaturated fatty acids from euryhaline microorganisms
US5340742A (en) 1988-09-07 1994-08-23 Omegatech Inc. Process for growing thraustochytrium and schizochytrium using non-chloride salts to produce a microfloral biomass having omega-3-highly unsaturated fatty acids
US5012761A (en) 1988-11-17 1991-05-07 Oh Suk Y Chicken egg having relatively high percentage of long chain fatty acids and method of reducing heart related disease in humans using such eggs
JP2664452B2 (ja) 1988-12-23 1997-10-15 サントリー株式会社 魚貝類用餌料
DE3920679A1 (de) 1989-06-23 1991-01-10 Milupa Ag Fettmischung zur herstellung von nahrungen, insbesondere saeuglingsnahrungen
US5272085A (en) 1989-10-31 1993-12-21 Queen's University Sodium tolerance genes derived from schizosaccharomyces pombe
US5407957A (en) * 1990-02-13 1995-04-18 Martek Corporation Production of docosahexaenoic acid by dinoflagellates
US5244921A (en) * 1990-03-21 1993-09-14 Martek Corporation Eicosapentaenoic acids and methods for their production
JPH0458847A (ja) 1990-06-23 1992-02-25 Nippon Oil & Fats Co Ltd 抗肥満症油脂および抗肥満症食品
US5297625A (en) * 1990-08-24 1994-03-29 Associated Universities, Inc. Biochemically enhanced oil recovery and oil treatment
JP3102645B2 (ja) 1990-10-15 2000-10-23 雪印乳業株式会社 栄養補給用栄養組成物
US5133963A (en) 1990-12-21 1992-07-28 Shuntaro Ise Method of producing commercially useful poultry products with increased concentrations of Omega-3 polyunsaturated fatty acids
DE4101976C2 (de) 1991-01-24 1995-09-21 Adatomed Pharma Chiron Behandlungssystem für Netzhautentfaltung
PH11992043811B1 (en) * 1991-01-24 2002-08-22 Martek Corp Arachidonic acid and methods for the production and use thereof
BR9205526A (pt) 1991-01-24 1994-04-19 Martek Corp Sociedade Norte Am Misturas de oleos microbianos e usos dos mesmos
US5658767A (en) 1991-01-24 1997-08-19 Martek Corporation Arachidonic acid and methods for the production and use thereof
JPH0728677B2 (ja) 1991-01-25 1995-04-05 理研ビタミン株式会社 養魚飼料用油脂組成物及びこれを用いた養魚飼料
JPH04271754A (ja) 1991-02-26 1992-09-28 Nippon Nousan Kogyo Kk 家畜、家禽用飼料および畜肉の生産方法
KR940005180B1 (ko) 1991-08-20 1994-06-13 주식회사 우방랜드 n-3 지방산이 축적된 돈육 생산용 사료 조성물
FR2686619B1 (fr) 1992-01-28 1995-07-13 Commissariat Energie Atomique Procede de production selective de lipides poly-insatures a partir d'une culture de micro-algues du type porphyridium et cuve utilisee dans ce procede.
GB2266652B (en) 1992-05-06 1995-11-22 Woobang Land Company Ltd Feed composition for a broiler
US6410281B1 (en) * 1992-07-10 2002-06-25 Omegatech, Inc. Reducing corrosion in a fermentor by providing sodium with a non-chloride sodium salt
KR940007396A (ko) 1992-09-30 1994-04-27 스마 요시츠기 교차 홈 타입의 등속회전 조인트
JP2558050B2 (ja) 1993-02-18 1996-11-27 イセ食品株式会社 鶏用飼料
JPH078215A (ja) 1993-04-30 1995-01-13 Kawasaki Steel Corp ドコサヘキサエン酸含有海洋性微細藻類食品素材およびその製造方法
JPH07255387A (ja) 1994-03-24 1995-10-09 Morinaga Milk Ind Co Ltd 食用家禽用飼料及び該飼料を用いる食用家禽の飼養方 法
WO1996005278A1 (de) 1994-08-16 1996-02-22 Dr. Frische Gmbh Verfahren zur gewinnung von nicht wasserlöslichen, nativen produkten aus nativen stoffgemengen mit hilfe der zentrifugalkraft
DE69637953D1 (de) * 1995-04-17 2009-07-30 Nat Inst Of Advanced Ind Scien Hoch ungesättigte fettsäurenproduzierende mikroorganismen und verfahren zur herstellung von hoch ungesättigten fettsäuren durch verwendung dieser mikroorganismen
JP2764572B2 (ja) * 1995-04-17 1998-06-11 工業技術院長 ドコサヘキサエン酸生産能を有する新規微生物及びそれを用いたドコサヘキサエン酸の製造方法
JPH08322475A (ja) 1995-05-29 1996-12-10 Nisshin Flour Milling Co Ltd 家禽類用飼料
NZ308652A (en) 1995-05-30 1998-08-26 Suntory Ltd Domestic fowl eggs having a high content of arachidonic acid and optionally docosahexaenoic acid acids
US20080175953A1 (en) 1995-06-07 2008-07-24 Martek Biosciences Corporation Process for the Heterotrophic Production of Microbial Products with High Concentrations of Omega-3 Highly Unsaturated Fatty Acids
JPH0965871A (ja) * 1995-09-04 1997-03-11 Kawasaki Steel Corp 海洋性微細藻類の培養方法
JPH0965971A (ja) * 1995-09-04 1997-03-11 Mitsuo Fukushige 加熱調理容器
JPH0984590A (ja) 1995-09-21 1997-03-31 Itouen:Kk α−リノレン酸の製造法
JPH09110888A (ja) 1995-10-17 1997-04-28 Nippon Oil & Fats Co Ltd リン脂質組成物
US6255505B1 (en) * 1996-03-28 2001-07-03 Gist-Brocades, B.V. Microbial polyunsaturated fatty acid containing oil from pasteurised biomass
EP0821068A3 (en) 1996-03-29 1999-06-02 Rohm And Haas Company Novel sphingolipids and a process thereto
EP0935667B1 (en) * 1996-07-23 2006-12-06 Nagase Chemtex Corporation Process for preparing docosahexaenoic acid and docosapentaenoic acid
FI964692A0 (fi) * 1996-11-25 1996-11-25 Primalco Ltd Foerbaettrad cellulassammansaettning foer bioefterbehandling av textilmaterial som innehaoller cellulosa
CZ299290B6 (cs) * 1997-02-20 2008-06-11 Dsm Ip Assets B.V. Zpusob výroby beta-laktamové slouceniny, zpusob prípravy a/nebo zlepšení vláknitého mikrobiálního kmene a použití chemicky definovaného fermentacníhomédia
US6566583B1 (en) 1997-06-04 2003-05-20 Daniel Facciotti Schizochytrium PKS genes
EP1003869A1 (en) † 1997-06-04 2000-05-31 Calgene LLC Production of polyunsaturated fatty acids by expression of polyketide-like synthesis genes in plants
US6054147A (en) 1997-08-14 2000-04-25 Omegatech, Inc. Method for increasing the incorporation efficiency of omega-3 highly unsaturated fatty acid in poultry meat
DE19749413A1 (de) 1997-11-07 1999-05-12 Hoechst Ag Neuartige Sophoroselipide, Verfahren zu deren Herstellung und Verwendung
DE19838011C2 (de) * 1998-08-21 2000-01-13 Christoph Syldatk Verfahren zur biotechnischen Herstellung von Fettsäuremethylestern ("Biodiesel") auf Molkebasis
US7271315B2 (en) 1999-01-14 2007-09-18 Martek Biosciences Corporation PUFA polyketide synthase systems and uses thereof
US7247461B2 (en) 1999-01-14 2007-07-24 Martek Biosciences Corporation Nucleic acid molecule encoding ORFA of a PUFA polyketide synthase system and uses thereof
DE19903095C2 (de) * 1999-01-27 2003-05-22 Nutrinova Gmbh Gewinnung von gamma-Linolensäure aus Protozoen der Gattung Colpidium
US6596766B1 (en) * 1999-03-04 2003-07-22 Suntory Limited Utilization of material containing docosapentaenoic acid
DE60130737T3 (de) 2000-01-28 2016-01-14 Dsm Ip Assets B.V. Verstärkte Produktion von Lipiden enthaltend mehrfachungesättigte Fettsäuren durch hochdichte Kulturen von eukariotischen Mikroben in Gärvorrichtungen
US6338866B1 (en) 2000-02-15 2002-01-15 Applied Food Biotechnology, Inc. Pet foods using algal or fungal waste containing fatty acids
TWI426126B (zh) 2001-04-16 2014-02-11 Dsm Ip Assets Bv 多不飽和脂肪酸（ｐｕｆａ）聚乙醯合成酶系統及其用途（二）
EP1623008B1 (en) 2003-03-26 2014-07-30 DSM IP Assets B.V. Pufa polyketide synthase systems and uses thereof
US7208160B2 (en) 2003-08-26 2007-04-24 Sol Katzen Process of treating sea algae and halophytic plants
DE102004017370A1 (de) 2004-04-08 2005-10-27 Nutrinova Nutrition Specialties & Food Ingredients Gmbh PUFA-PKS Gene aus Ulkenia
JP4821409B2 (ja) * 2006-03-31 2011-11-24 アイシン・エィ・ダブリュ株式会社 自動変速機の油圧制御装置
US8585552B2 (en) * 2006-08-01 2013-11-19 GM Global Technology Operations LLC Torque converter clutch lock on method and low slip regulation
US7485073B2 (en) * 2006-08-02 2009-02-03 Horng-Jiun Chang Muscle exerciser
WO2009042770A1 (en) 2007-09-25 2009-04-02 Monsanto Technology Llc Use of oils with high concentrations of polyunsaturated fatty acids in plastics and surface coatings
EP2408797B1 (en) 2009-03-19 2017-03-15 DSM IP Assets B.V. Polyunsaturated fatty acid synthase nucleic acid molecules and polypeptides, compositions, and methods of making and uses thereof
FR3015516B1 (fr) 2013-12-19 2016-01-22 Roquette Freres Procede d'enrichissement en dha de la biomasse de microalgues du genre thraustochytrium

Also Published As

Publication number Publication date
ES2208141T1 (es) 2004-06-16
EP2341126A2 (en) 2011-07-06
US20080032387A1 (en) 2008-02-07
WO2001054510A9 (en) 2002-10-17
HUP0301794A2 (hu) 2003-09-29
EP2341126A3 (en) 2011-10-05
US20080032360A1 (en) 2008-02-07
CA2396691A1 (en) 2001-08-02
US8187846B2 (en) 2012-05-29
JP6534156B2 (ja) 2019-06-26
AU2006207882A1 (en) 2006-10-05
EP2338974B1 (en) 2017-09-27
AU785124B2 (en) 2006-09-28
EP1251744A1 (en) 2002-10-30
US20080032363A1 (en) 2008-02-07
JP2004501603A (ja) 2004-01-22
MX345559B (es) 2017-02-03
ES2653545T3 (es) 2018-02-07
HUP0301794A3 (en) 2011-04-28
KR101293135B1 (ko) 2013-09-12
CN101519678B (zh) 2013-11-13
JP2005270115A (ja) 2005-10-06
AU2006207882B2 (en) 2009-06-11
AU3120101A (en) 2001-08-07
DE60130737T3 (de) 2016-01-14
DE60130737T8 (de) 2008-10-30
EP1251744B2 (en) 2015-08-26
PL362620A1 (en) 2004-11-02
JP2010057508A (ja) 2010-03-18
ES2208141T3 (es) 2008-04-01
KR20030013368A (ko) 2003-02-14
CZ20022508A3 (cs) 2003-02-12
CA2786722A1 (en) 2001-08-02
JP2014087375A (ja) 2014-05-15
EP2341127A2 (en) 2011-07-06
PT1251744E (pt) 2007-11-08
US8133706B2 (en) 2012-03-13
US20010046691A1 (en) 2001-11-29
WO2001054510A1 (en) 2001-08-02
CN101519680B (zh) 2013-11-13
CA2760879A1 (en) 2001-08-02
RU2326171C2 (ru) 2008-06-10
EP1707055A2 (en) 2006-10-04
JP2016202189A (ja) 2016-12-08
CA2396691C (en) 2012-09-18
US8206956B2 (en) 2012-06-26
US20150320084A1 (en) 2015-11-12
EP2960325B1 (en) 2017-09-27
NO20023588L (no) 2002-09-26
DE60130737T2 (de) 2008-07-17
US8187845B2 (en) 2012-05-29
NZ520420A (en) 2005-03-24
US8288133B2 (en) 2012-10-16
CN100491519C (zh) 2009-05-27
EP2341125A3 (en) 2011-10-05
KR20070073986A (ko) 2007-07-10
ZA200205957B (en) 2003-11-19
US8216812B2 (en) 2012-07-10
CN101519679A (zh) 2009-09-02
US20060286648A1 (en) 2006-12-21
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EP2341125B1 (en) 2017-09-27
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AU2013205894B2 (en) 2016-06-02

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