PT2357006E - Conjugados de fármacos e sua utilização para tratamento do cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa - Google Patents
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Description
DESCRIÇÃO "Conjugados de fármacos e sua utilização para tratamento do cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa"
1. CAMPO DO INVENTO 0 presente invento é dirigido a Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando e a compostos de Fármaco-Ligador, a composições compreendendo um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando ou um Composto de Fármaco-Ligador, e à utilização dos mesmos para tratar cancro, um doença autoimune ou uma doença infeciosa.
2. ANTECEDENTES DO INVENTO Vários compostos peptidicos curtos têm sido isolados a partir de fontes naturais e constatou-se que têm atividade biológica. Foram também preparados análogos destes compostos, e constatou-se que alguns têm atividade biológica. Por exemplo, a auristatina E (Patente dos E.U.A. 5635483 de Pettit et al.) é um análogo sintético do produto marinho natural dolastatina 10, um agente que inibe a polimerização de tubulina por ligação ao mesmo local na tubulina que o fármaco anticanceroso vincristina (G. R. Pettit, Prog. Chem. Org. Nat. Prod., 70: 1-79 (1997)). Dolastatina 10, auristatina PE e auristatina E são péptidos lineares possuindo quatro aminoácidos, três dos quais são únicos da classe de compostos dolastatina. Tanto a dolastatina 10 como a auristatina PE estão atualmente a ser utilizadas em ensaios clínicos em humanos para tratar o cancro. As diferenças estruturais entre dolastatina 10 e auristatina E residem no resíduo C-terminal, no qual o grupo tiazolefenetilamina de dolastatina 10 está substituído por uma unidade norefedrina na auristatina E.
As referências seguintes divulgam compostos de dolastatina e auristatina e sues análogos, e sua utilização para tratamento do cancro:
Publicação Internacional N.2 WO 96/33212 Al de Teikoku Hormone
Mfg. Co ., Ltd.;
Publicação Internacional N.2 WO 96/14856 AI de Arizona Board of Regents;
Publicação de Patente Europeia N.2 EP 695757 A2 de Arizona Board of Regents;
Publicação de Patente Europeia N.2 EP 695758 A2 de Arizona Board of Regents;
Publicação de Patente Europeia N.2 EP 695759 A2 de Arizona Board of Regents;
Publicação Internacional N.2 WO 95/09864 Ai de Teikoku Hormone Mfg. Co ., Ltd.;
Publicação Internacional N.2 WO 93/03054 Ai te Teikoku Hormone Mfg. Co ., Ltd.;
Patente dos E.U.A. N.2 6323315 Bi de Pettit et al.; G.R. Pettit et al., Anti-Cancer Drug Des. 13(4) : 243-277 (1998); G.R. Pettit et al. , Anti-Cancer Drug Des. 10(7) : 529-544 (1995); e K. Miyazaki et al. , Chem. Pharm. Buli. 43(10) : 1706-18 (1995) .
Apesar de resultados in vitro para compostos da classe de dolastatina e seus análogos, toxicidades gerais significativas para as doses requeridas para se conseguir um efeito terapêutico comprometem a sua eficácia em estudos clínicos. Consequentemente, existe uma necessidade óbvia na especialidade para derivados de dolastatina possuindo toxicidade significativamente inferior, mas ainda assim com eficiência terapêutica útil, em comparação com as atuais terapias com fármaco dolastatina. A citação de qualquer referência na Secção 2 deste pedido de patente não é uma admissão de que a referência é especialidade anterior a este pedido de patente.
3. SUMÁRIO DO INVENTO
Num aspeto, o presente invento proporciona uma composição farmacêutica adaptada para administração intravenosa a seres humanos compreendendo compostos de Fórmula Ia:
ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis onde, L- é um anticorpo monoclonal que se liga imunoespecificamente ao antigénio CD30; -A- é uma unidade de Extensor; a é 1; cada -W- é independentemente uma unidade de Aminoácido; w é um número inteiro que varia de 2 a 12; -Y- é uma unidade de Espaçador autodestrutivo; y é 1 ou 2; p varia de 1 a cerca de 20 e é o número médio de unidades —Aa—W„—Yy—D por anticorpo na composição; e -D é uma unidade de Fármaco, em que os compostos de Fórmula Ia têm a estrutura
ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis.
Um composto de fórmula Ia ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis (um "Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando") são úteis para tratamento ou prevenção de cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa num animal. São também divulgados compostos de fármaco-ligando com a fórmula lia:
e seus sais e solvatos farmaceuticamente aceitáveis onde, independentemente em cada localização: R1 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo e -C3-C8 carbociclo; e R2 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; ou R1 e R2 em conjunto têm a fórmula -(CRaRb)n- onde Ra e Rb são selecionados independentemente entre -H, -Ci-Cs alquilo e -C3-Ce carbociclo e n é selecionado entre 2, 3, 4, 5 e 6, e formam um anel com o átomo de azoto ao qual estão ligados; R3 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -C1-C8 alquil-(C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil- (C3-C8 heterociclo); R4 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -C1-C8 alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil- (C3-C8 heterociclo) onde R5 é selecionado entre -H e -metilo; ou R4 e R5 em conjunto têm a fórmula -(CRaRb)n- onde Ra e Rb são selecionados independentemente entre -H, -Ci-Cs alquilo e -C3-C8 carbociclo e n é selecionado entre 2, 3, 4, 5 e 6, e formam um anel com o átomo de carbono ao qual estão ligados; R6 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; R7 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs) alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -Ci-Ce alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil-(C3-C8 heterociclo); cada R8 é selecionado independentemente entre -H, -OH, -Ci-Ce alquilo, -C3-C8 carbociclo e -0-(Ci-Cs alquilo); R9 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; X é -0-, -S-, -NH- ou -N(R14)-; R11 é selecionado entre -H, -OH, -NH2, -NHR14, -N(R14)2, -Ci-C8 alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-C8 alquil-arilo, -Ci-Cs alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil- (C3-C8 heterociclo) ; ou R11 é um átomo de oxigénio que forma uma unidade carbonilo (C=0) com o átomo de carbono ao qual está ligado e um átomo de hidrogénio neste átomo de carbono está substituído por uma das ligações na ligação dupla (C=0); cada R12 é selecionado independentemente entre -arilo e -C3-C8 heterociclo; cada R14 é independentemente -H ou -Ci-Cs alquilo; e R16 é -Yy-Ww-A' onde cada -W- é independentemente uma unidade de Aminoácido; -Y- é uma unidade de Espaçador; w é um número inteiro que varia de 0 a 12; y é 0, 1 ou 2; e -A' é selecionado entre
onde G é selecionado entre -Cl, -Br, -I, -O-mesilo e -O-tosilo; J é selecionado entre -Cl, -Br, -I, -F, -OH, -0-N-succinimida, -0-(4-nitrofenilo), -0-pentafluorofenilo, -0-tetrafluorofenilo e -0-C (0) -OR18; R17 é selecionado entre -Ci-Cio alquileno-, -C3-C8 carbociclo-, -0-(Ci-Cs alquil)-, -arileno-, -C1-C10 alquileno-arileno-, -arileno-Ci-Cio alquileno-, -C1-C10 alquileno- (C3-C8 carbociclo)-, - (C3-C8 carbociclo)-C1-C10 alquileno-, -C3-C8 heterociclo-, -C1-C10 alquileno- (C3-C8 heterociclo)-, -(C3-C8 heterociclo)-C1-C10 alquileno-, - (CH2CH2O) r- e - (CH2CH2O) r-CH2-; r é um número inteiro que varia de 1-10; e R18 é -C1-C8 alquilo ou -arilo.
Um composto de fórmula lia ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis (um "Composto de Fármaco-Ligador") são úteis para tratamento de cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa num animal ou úteis como intermediários para a síntese de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. São também divulgadas composições compreendendo uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando e um transportador ou veículo farmaceuticamente aceitável. São também divulgadas composições compreendendo uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador e um transportador ou veículo farmaceuticamente aceitável. São também divulgados métodos para matar ou inibir a multiplicação de uma célula de tumor ou célula de cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. São também divulgados métodos para tratamento de cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para tratamento de cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. São também divulgados métodos para matar ou inibir a replicação de uma célula que expressa um anticorpo autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para matar ou inibir a replicação de uma célula que expressa um anticorpo autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. São também divulgados métodos para tratamento de uma doença autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador . São também divulgados métodos para tratamento de uma doença autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando . São também divulgados métodos para tratamento de uma doença infeciosa, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador . São também divulgados métodos para tratamento de uma doença infeciosa, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando . São também divulgados métodos para prevenir a multiplicação de uma célula de tumor ou célula de cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para prevenir a multiplicação de uma célula de tumor ou célula de cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. São também divulgados métodos para prevenir o cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para prevenir o cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. São também divulgados métodos para prevenir a multiplicação de uma célula que expressa um anticorpo autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para prevenir a multiplicação de uma célula que expressa um anticorpo autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando . São também divulgados métodos para prevenir uma doença autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para prevenir uma doença autoimune, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando . São também divulgados métodos para prevenir uma doença infeciosa, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto de Fármaco-Ligador. São também divulgados métodos para prevenir uma doença infeciosa, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando . É também divulgado um Composto de Fármaco-Ligador que pode ser utilizado como um intermediário para a síntese de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando. 0 presente invento pode ser compreendido mais plenamente por referência à descrição detalhada seguinte, Figuras e exemplos ilustrativos, que pretendem exemplificar concretizações do invento.
4. BREVE DESCRIÇÃO DOS DESENHOS A FIG. 1 mostra a citotoxicidade de Composto 49 e Composto 53 contra a linha de células H3396. A linha -D- representa o Composto 49 e a linha -o- representa o Composto 53. A FIG. 2 mostra a citotoxicidade de Compostos 64, 65, 68 e 69 contra a linha de células H3396. A linha representa o Composto 64, a linha - - representa o Compost65, a linha - representa o Compostc68 e a linha -X- representa o Composto 69. A FIG. 3 mostra a citotoxicidade de Compostos 64, 65, 68 e 69 contra a linha de células HCT-116. A linha representa o Composto 64, a linha - - representa o Compost65, a linha - representa o Compostc68 e a linha -X- representa o Composto 69. A FIG. 4 mostra a citotoxicidade de Compostos 66 e 68 contra a linha de células H3396. A linha - - representa o
Composto 66 e a linha representa o Composto 68. A FIG. 5 mostra a citotoxicidade de Compostos 66, 68 e 69 contra a linha de células colorretais de humano Karpas. A linha representa o Composto 66, a linha - - representa o
Composto 68 e a linha -X- representa o Composto 69. A FIG. 6 mostra a citotoxicidade de Compostos 66 e 67 contra a linha de células H3396 em função da duração de exposição. As células ou foram expostas aos conjugados durante toda a duração do ensaio sem lavagem (96 horas), ou foram expostas aos conjugados durante 2 horas, lavadas e depois incubadas durante 94 horas adicionais. No final do período de 96 horas, as células foram pulsadas com Azul de Alamar para determinar a viabilidade celular. A linha - - representa o
Composto 66 para 2 h de exposição, a linha representa o
Composto 67 para 2 h de exposição, a linha -·- representa o
Composto 66 para 96 h de exposição, e a linha -- representa
Composto 67 para 96 h de exposição. A FIG. 7 mostra o efeito de Compostos 66-69 no crescimento de tumores de xenoenxerto de adenocarcinoma do pulmão de humano L2987 que foram implantados em ratinhos nus. A linha -X-representa tumor não tratado, a linha - - representa o Composto 66, a linha representa o Composto 68, a linha -V- o
Composto 67, e a linha -0- representa o Composto 69. A FIG. 8 mostra os efeitos de Compostos 66-69 no crescimento de tumores de xenoenxerto de linfoma de células grandes anaplásico Karpas de humano que foram implementadas em ratinhos nus. A linha -X- representa tumor não tratado, a linha - representa o Compost67, a linha -·- representa o Composto 69, a linha - - representa o Composto66, e a linha -o- representa o Composto 68.
5. DESCRIÇÃO DETALHADA DO INVENTO
5.1 DEFINIÇÕES
Exemplos de um "animal" incluem, mas não estão limitados a, um humano, rato, ratinho, cobaia, macaco, porco, cabra, vaca, cavalo, cão, gato, pássaro e galinha. "Arilo" refere-se a um grupo aromático carbociclico Exemplos de grupos arilo incluem, mas não estão limitados a, fenilo, naftilo e antracenilo. Um grupo aromático carbociclico ou um grupo aromático heterociclico podem estar não substituídos ou substituídos com um ou mais grupos incluindo, mas não limitados a, -Ci-Cs alquilo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -C (0) R ' , -0C (0) R ' , -C (0) OR ' , -C(0)NH2, -C(0)NHR', -C(0)N(R')2, -NHC (0) R' , -S(0)2R', -S(0)R', -OH, -halogéneo, -N3, -NH2, - NH (R') , -N (R' ) 2 e -CN; onde cada R' é selecionado independentemente entre -Ci-Cs alquilo e arilo. 0 termo "Ci-Cs alquilo" como aqui utilizado refere-se a um hidrocarboneto saturado ou insaturado, de cadeia linear ou ramificada, possuindo de 1 a 8 átomos de carbono. Grupos "Ci-Cs alquilo" representativos incluem, mas não estão limitados a, -metilo, -etilo, -n-propilo, -n-butilo, -n-pentilo, -n-hexilo, -n-heptilo, -n-octilo, -n-nonilo e -n-decilo; enquanto Ci-Cs alquilos ramificados incluem, mas não estão limitados a, isopropilo, -sec-butilo, -isobutilo, -terc-butilo, isopentilo, -2-metilbutilo, Ci-Cs alquilos insaturados incluem, mas não estão limitados a, -vinilo, -alilo, -1-butenilo, -2-butenilo, -isobutilenilo, -1-pentenilo, -2- pentenilo, -3-metil-l-butenilo, -2-metil-2-butenilo, -2,3-dimetil-2-butenilo, 1-hexilo, 2-hexilo, 3-hexilo, acetilenilo, -propinilo, -1-butinilo, -2-butinilo, -1- pentinilo, -2-pentinilo, -3-metil-l-butinilo. metilo, etilo, propilo, isopropilo, n-butilo, isobutilo, sec-butilo, terc- butilo, n-pentilo, isopentilo, neopentilo, n-hexilo, iso-hexilo, 2-metilpentilo, 3-metilpentilo, 2,2-dimetilbutilo, 2.3- dimetilbutilo, 2,2-dimetilpentilo, 2,3-dimetilpentilo, 3.3- dimetilpentilo, 2,3,4-trimetilpentilo, 3-metil-hexilo, 2.2- dimetil-hexilo, 2,4-dimetil-hexilo, 2,5-dimetil-hexilo, 3,5-dimetil-hexilo, 2,4-dimetilpentilo, 2-metil-heptilo, 3- metil-heptilo, n-heptilo, iso-heptilo, n-octilo e iso-octilo. Um grupo Ci-Cs alquilo pode estar não substituído ou substituído com um ou mais grupos incluindo, mas não limitado a, —Ci—Ce alquilo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -C(0)R', OC (0) R ' , -C (0) OR ' , -C(0)NH2, -C(0)NHR', -C(0)N(R')2, NHC (0) R' , -S(0)2R', -S(0)R', -OH, -halogéneo, -N3, -NH2, -NH (R') , -N (R' ) 2 e -CN; onde cada R' é selecionado independentemente entre -Ci-Cs alquilo e arilo.
Um "C3-C8 carbociclo" é um anel carbocíclico não aromático, saturado ou insaturado, de 3, 4, 5, 6, 7 ou 8 membros. C3-C8 carbociclos representativos incluem, mas não estão limitados a, -ciclopropilo, -ciclobutilo, -ciclopentilo, -ciclopentadienilo, -ciclo-hexilo, - ciclohexenilo, -1,3-ciclo-hexadienilo, -1,4-ciclo-hexadienilo, - cicloheptilo, 1.3- ciclo-heptadienilo, -1,3,5-ciclo-heptatrienilo, ciclooctilo e -ciclooctadienilo. Um grupo C3-C8 carbociclo pode estar não substituído ou substituído com um ou mais grupos incluindo, mas não limitados a, -Ci-Cs alquilo, -0- (Ci-Cs alquilo), -arilo, -C(0)R', -0C(0)R', -C(0)0R', -C(0)NH2, - C (0) NHR' , -C(0)N(R')2, -NHC(0)R', -S(0)2R', -S(0)R', -OH, - halogéneo, -N3, -NH2, -NH(R'), -N(R')2 e -CN; onde cada R' é selecionado independentemente entre -Ci-Cs alquilo e arilo.
Um "C3-C8 carbociclilo" refere-se a um grupo C3-C8 carbociclo definido acima onde um dos átomos de hidrogénio dos grupos carbociclo está substituído por uma ligação.
Um "C1-C10 alquileno" é um grupo hidrocarboneto saturado de cadeia linear da fórmula -(CH2)i-io-. Exemplos de um C1-C10 alquileno incluem metileno, etileno, propileno, butileno, pentileno, hexileno, heptileno, octileno, nonileno e decaleno.
Um "arileno" é um grupo arilo que tem duas ligações covalentes e podem estar nas configurações orto, meta ou para como se mostra nas estruturas seguintes:
nas quais o grupo fenilo pode estar não substituído ou substituído com até quatro grupos incluindo, mas não limitados a, -C1-C8 alquilo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -C(0)R', OC (0) R ' , -C (0) OR ' , -C(0)NH2, -C(0)NHR', -C(0)N(R')2, NHC (0) R' , -S(0)2R', -S(0)R', -OH, -halogéneo, -N3, -NH2, - NH (R') , -N (R' ) 2 e -CN; onde cada R' é selecionado independentemente entre -Ci-Cs alquilo e arilo.
Um "C3-C8 heterociclo" refere-se a um C3-C8 carbociclo aromático ou não aromático no qual um a quatro dos átomos de carbono de anel estão substituídos independentemente por um heteroátomo entre o grupo consistindo de 0, Se N. Exemplos representativos de um C3-C8 heterociclo incluem benzofuranilo, benzotiofeno, indolilo, benzopirazolilo, cumarinilo, isoquinolinilo, pirrolilo, tiofenilo, furanilo, tiazolilo, imidazolilo, pirazolilo, triazolilo, quinolinilo, pirimidinilo, piridinilo, piridonilo, pirazinilo, piridazinilo, isotiazolilo, isoxazolilo e tetrazolilo. Um C3-C8 heterociclo pode estar não substituído ou substituído com até sete grupos incluindo, -Ci-Cs alquilo, -0- (Ci-Cs alquilo), - arilo, -C (0) R' , -0C(0)R\ -C(0)0R\ -C(0)NH2, -C(0)NHR', - C(0)N(R')2 -NHC(0)R', -S(0)2R', -S(0)R', -OH, -halogéneo, -N3, -NH2, -NH(R'), —N (R' ) 2 e -CN; onde cada R' é selecionado independentemente entre -Ci-Cs alquilo e arilo. "C3-C8 heterociclilo" refere-se a um grupo C3-C8 heterociclo definido onde um dos átomos de hidrogénio dos grupos heterociclo está substituído por uma ligação. Um C3-C8 heterociclilo pode estar não substituído ou substituído com até seis grupos incluindo -Ci-Cs alquilo, -0- (Ci-Cs alquilo), -arilo, -C (0) R' , -0C(0)R', -C(0)0R', -C(0)NH2 , -C(0)NHR', -C(0)N(R')2, -NHC(0)R', -S(0)2R', -S(0)R', -OH, -halogéneo, -N3, -NH2, -NH(R'), —N (R' ) 2 e -CN; onde cada R' é selecionado independentemente entre -Ci-Cs alquilo e arilo.
Um "Composto do Invento" é um Composto de Fármaco-Ligador ou um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando.
Numa concretização, os Compostos do Invento estão numa forma isolada ou purificada. Como aqui utilizado, "isolado" significa separado de outros componentes de (a) um fonte natural, tal como uma célula ou cultura de células de planta ou animal, ou (b) uma mistura reaccional de química orgânica de síntese. Como aqui utilizado, "purificado" significa que, quando isolado, o isolado contém pelo menos 95%, preferivelmente pelo menos 98%, de um Composto do Invento em peso do isolado.
Exemplos de um "grupo protetor de hidroxilo" incluem, metoximetiléter, 2-metoxietoximetiléter, tetra-hidropiraniléter, benziléter, p-metoxibenziléter, trimetilsililéter, tri-isopropilsililéter, t-butildimetilsililéter, trifenilmetilsililéter, éster de acetato, ésteres de acetato substituído, pivaloato, benzoato, metanossulfonato e p-toluenossulfonato. "Grupo rejeitável" refere-se a um grupo funcional que pode ser substituído por outro grupo funcional. Estes grupos rejeitáveis são bem conhecidos na especialidade, e exemplos incluem, um halogeneto (e.g., cloreto, brometo, iodeto), metanossulfonilo (mesilo), p-toluenossulfonilo (tosilo), trifluorometilsulfonilo (triflato) e trifluorometilsulfonato. 0 termo "anticorpo", como aqui utilizado, refere-se a uma molécula de imunoglobulina a todo o comprimento ou a uma porção imunologicamente ativa de uma molécula de imunoglobulina a todo o comprimento, i.e., uma molécula que contém um local de ligação de antigénio que se liga imunoespecificamente a um antigénio de um alvo de interesse ou sua parte, estes alvos incluindo, células de cancro ou células que produzem anticorpos autoimunes associados a uma doença autoimune. A imunoglobulina aqui divulgada pode ser de qualquer tipo (e.g., IgG, IgE, IgM, IgD, IgA e IgY), classe (e.g., IgGl, IgG2, IgG3, IgG4, IgAl e IgA2) ou subclasse de moléculas de imunoglobulina. As imunoglobulinas podem ser derivadas de qualquer espécie. Preferivelmente, porém, a imunoglobulina é de origem humana, murina ou coelho. Anticorpos úteis no invento são monoclonais, e incluem anticorpos, monoclonais, biespecificos, humanos, humanizados ou quiméricos, anticorpos de cadeia simples, Fv, fragmentos Fab, fragmentos F(ab')r fragmentos F(ab')2, fragmentos produzidos por uma biblioteca de expressão de Fab, anticorpos anti-idiotipicos (anti-Id) , CDR, e fragmentos de ligação a epítopos de qualquer dos anteriores que se ligam imunoespecificamente ao antigénio CD30. A expressão "sal farmaceuticamente aceitável", como aqui utilizada, refere-se a sais orgânicos ou inorgânicos farmaceuticamente aceitáveis de um Composto do Invento. Os Compostos do Invento contêm pelo menos um grupo amino, e deste modo sais de adição de ácido podem ser formados com este grupo amino. Sais preferidos incluem sais de sulfato, citrato, acetato, oxalato, cloreto, brometo, iodeto, nitrato, bissulfato, fosfato, fosfato ácido, isonicotinato, lactato, salicilato, citrato ácido, tartarato, oleato, tanato, pantotenato, bitartarato, ascorbato, succinato, maleato, gentisinato, fumarato, gluconato, glucaronato, sacarato, formato, benzoato, glutamato, metanossulfonato, etanossulfonato, benzenossulfonato, p-toluenossulfonato e pamoato (i.e., 1, 1'-metileno-bis-(2-hidroxi-3-naftoato)) . Um sal farmaceuticamente aceitável pode envolver a inclusão de outra molécula tal como um ião acetato, um ião succinato ou outro contra-ião. 0 contra-ião pode ser qualquer porção orgânica ou inorgânica que estabiliza a carga no composto de origem. Adicionalmente, um sal farmaceuticamente aceitável pode ter mais do que um átomo carregado na sua estrutura. Casos onde múltiplos átomos carregados são parte do sal farmaceuticamente aceitável podem ter múltiplos contra-iões. Assim, um sal farmaceuticamente aceitável pode ter um ou mais átomos carregados e/ou um ou mais contra-iões. "Solvato farmaceuticamente aceitável" refere-se a uma associação de uma ou mais moléculas de solvente e um Composto do Invento. Exemplos de solventes que formam solvatos farmaceuticamente aceitáveis incluem água, isopropanol, etanol, metanol, DMSO, acetato de etilo, ácido acético e etanolamina.
No contexto do cancro, o termo "tratamento" inclui qualquer ou a totalidade de: prevenção do crescimento de células de tumor ou células de cancro, prevenção da replicação de células de tumor ou células de cancro, mitigação da carga tumoral global e melhoria de um ou mais sintomas associados à doença.
No contexto de uma doença autoimune, o termo "tratamento" inclui qualquer ou a totalidade de: prevenção da replicação de células associadas a um estado de doença autoimune incluindo, mas não limitadas a, células capazes de produzir um anticorpo autoimune, mitigação da carga de anticorpos autoimunes e melhoria de um ou mais sintomas de uma doença autoimune.
No contexto de uma doença infeciosa, o termo "tratamento" inclui qualquer ou a totalidade de: prevenção do crescimento, multiplicação ou replicação do patogénio que causa a doença infeciosa e melhoria de um ou mais sintomas de uma doença infeciosa.
As abreviaturas seguintes são aqui utilizadas e têm as definições indicadas: AE é auristatina E, Boc é N-(t-butoxicarbonilo), cit é citrulina, dap é dolaproina, DCC é 1,3-diciclo-hexilcarbodi-imida, DCM é diclorometano, DEA é dietilamina, DEAD é azodicarboxilato de dietilo, DEPC é dietilfosforilcianidato, DIAD é azodicarboxilato de di-isopropilo, DIEA é N, Ν'-di-isopropiletilamina, dil é dolaisoleuina, DMAP é 4-dimetilaminopiridina, DME é etilenoglicoldimetiléter (ou 1,2-dimetoxietano), DMF é N,N-dimetilformamida, DMSO é dimetilsulfóxido, doe é dolafenina, dov é N,N-dimetilvalina, DTNB é 5,5'-ditiobis(ácido 2-nitrobenzóico), DTPA é ácido dietilenotriaminapenta-acético, DTT é ditiotreitol, EDCI é cloridrato de l-(3-dimetilaminopropil)-3-etilcarbodi-imida, EEDQ é 2-etoxi-l- etoxicarbonil-1,2-di-hidroquinolina, ES-MS é espectrometria de massa de electrospray, EtOAc é acetato de etilo, Fmoc é N-(9-fluorenilmetoxicarbonilo), gly é glicina, HATU é hexafluorofosfato de 0-(7-azabenzotriazol-l-il) -N, N, Ν' , Ν' -tetrametilurónio, HOBt é 1-hidroxibenzotriazole, HPLC é cromatografia líguida de alta pressão, ile é isoleucina, lys é lisina, MeCN é acetonitrilo, MeOH é metanol, Mtr é 4-anisildifenilmetilo (ou 4-metoxitritilo), nor é (IS, 2R)-(+)-norefedrina, PAB é p-aminobenzilo, PBS é solução salina tamponada com fosfato (pH 7,4), PEG é polietilenoglicol, Ph é fenilo, Pnp é p-nitrofenilo, MC é 6-maleimidocaproilo, Ph é fenilo, phe é L-fenilalanina, PyBrop é hexafluorofosfato de bromo-tris-pirrolidinofosfónio, SEC é cromatografia de exclusão de tamanhos, Su é succinimida, TFA é ácido trifluoroacético, TLC é cromatografia de camada fina, UV é ultravioleta, vai é valina.
5.2 CONJUGADOS DE FÁRMACO-LIGADOR-LIGANDO
Como acima declarado, o invento proporciona uma composição farmacêutica adaptada para administração intravenosa a seres humanos compreendendo os compostos da Fórmula Ia:
ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis onde, L- é um anticorpo monoclonal gue se liga imunoespecificamente ao antigénio CD30; -A- é uma unidade de Extensor; a é 1; cada -W- é independentemente uma unidade de Aminoácido; w é um número inteiro que varia de 2 a 12; -Y- é uma unidade de Espaçador autodestrutivo; y é 1 ou 2; p varia de 1 a cerca de 20 e é o número médio de unidades —Aa—W„—Yy—D por anticorpo na composição; e -D é uma unidade de Fármaco, em que os compostos de Fórmula Ia possuem a estrutura
ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis.
Numa concretização, p varia de 1 a cerca de 8.
Noutra concretização, p varia de 1 a cerca de 3.
Noutra concretização, p varia de cerca de 3 a cerca de 5. Ainda noutra concretização, p varia de cerca de 7 a cerca de 9.
Noutra concretização, p é cerca de 8.
Noutra concretização, p é cerca de 4.
Numa concretização adicional, p é cerca de 2.
Um composto de fórmula Ia ilustrativo tem a estrutura:
e seus sais e solvatos farmaceuticamente aceitáveis, onde p varia de cerca de 7 a cerca de 9.
Numa concretização, p varia de 1 a cerca de 3.
Noutra concretização, p varia de cerca de 3 a cerca de 5.
Noutra concretização, p é cerca de 8.
Ainda noutra concretização, p é cerca de 4.
Numa concretização adicional, p é cerca de 2. É entendido que p é o número médio de unidades -Aa-Ww-Yy-D por ligando num Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando de fórmula Ia.
Numa concretização p varia de 1 a 15.
Noutra concretização p varia de 1 a 10.
Noutra concretização, p varia de 1 a cerca de 8.
Numa concretização adicional p varia de 1 a cerca de 5.
Noutra concretização p varia de 1 a cerca de 3.
Numa concretização p varia de cerca de 3 a cerca de 5.
Numa concretização p varia de cerca de 7 a cerca de 9.
Noutra concretização p é cerca de 8.
Ainda noutra concretização p é cerca de 4.
Ainda noutra concretização p é cerca de 2.
Os Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando de fórmula Ia podem existir como misturas, onde cada componente de uma mistura tem um valor de p diferente. Por exemplo, um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando pode existir como uma mistura de dois Conjugados separados, um componente Conjugado onde p é 7 e o outro componente Conjugado onde p é 8.
Numa concretização, um Conjugado de Fármaco-Ligador-
Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 1, 2 e 3, respetivamente.
Noutra concretização, um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 3, 4 e 5, respetivamente.
Noutra concretização, um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 5, 6 e 7, respetivamente.
Ainda noutra concretização, um Conjugado de Fármaco-
Ligador-Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 7, 8 e 9, respetivamente.
Ainda noutra concretização, um Conjugado de Fármaco-
Ligador-Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 9, 10 e 11, respetivamente.
Ainda noutra concretização, um Conjugado de Fármaco-
Ligador-Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 11, 12 e 13, respetivamente.
Noutra concretização, um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando existe como uma mistura de três conjugados separados onde p para os três conjugados separados é 13, 14 e 15, respetivamente.
5.3 COMPOSTOS FÁRMÃ.CO-LIGADOR São também divulgados compostos da fórmula Ili:
e seus sais e solvatos farmaceuticamente aceitáveis onde, independentemente em cada localização: R2 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; R3 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -C1-C8 alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil-(C3-C8 heterociclo); R4 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -C1-C8 alquil-(C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil- (C3-C8 heterociclo) onde R5 é selecionado entre -H e -metilo; ou R4 e R5 em conjunto têm a fórmula -(CRaRb)n- onde Ra e Rb são selecionados independentemente entre -H, -Ci-Cs alquilo e -C3-C8 carbociclo e n é selecionado entre 2, 3, 4, 5 e 6, e formam um anel com o átomo de carbono ao qual estão ligados; R6 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; R7 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -C1-C8 alquil-(C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil-(C3-C8 heterociclo); cada R8 é selecionado independentemente entre -H, OH, -C1-C8 alquilo -C3-C8 carbociclo e -0-(Ci-Cs alquilo); R9 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; R11 é selecionado entre -H, -OH, -NH2, -NHR14, -N(R14)2, -Ci-C8 alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -Ci-C8 alquil-arilo, -Ci-Cs alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil- (C3-C8 heterociclo) ; ou R11 é um átomo de oxigénio que forma uma unidade carbonilo (C=0) com o átomo de carbono ao qual está ligado e um átomo de hidrogénio neste átomo de carbono está substituído por uma das ligações na ligação dupla (C=0); cada R12 é selecionado independentemente entre -arilo e -C3-C8 heterociclo; R13 é selecionado entre hidrogénio, -OH, -NH2, -NHR14, -N (R14) 2, Ci-Ce alquilo, C3-C8 carbociclo, -0-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -alquil-arilo, -alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -alquil- (C3-C8 heterociclo); cada R14 é independentemente -H ou -Ci-Cs alquilo; R16 é -Yy-Ww-A' onde cada -W- é independentemente uma unidade de Aminoácido; -Y- é uma unidade de Espaçador; w é um número inteiro que varia de 0 a 12; y é 0, 1 ou 2; e -A' é selecionado entre onde
G é selecionado entre -Cl, -Br, -I, -0-mesilo e -0-tosilo; J é selecionado entre -Cl, -Br, -I, -F, -OH, -0-N- succinimida, -0-(4-nitrofenilo), -0-pentafluorofenilo, -0-tetrafluorofenilo e -0-C (0) -OR18; R17 é selecionado entre -C1-C10 alquileno-, -C3-C8 carbociclo-, -0- (Ci-Cs alquilo)-, -arileno-, -C1-C10 alquileno- arileno-, -arileno-Ci-Cio alquileno-, -C1-C10 alquileno- (C3-C8 carbociclo)- (C3-C8 carbociclo)-C1-C10 alquileno-, -C3-C8 heterociclo-, -C1-C10 alquileno- (C3-C8 heterociclo)-, -(C3-C8 heterociclo)-C1-C10 alquileno-, - (CR2CH2O) r- e - (CH2CHzO) r-CH2-; r é um número inteiro que varia de 1-10; e R18 é -C1-C8 alquilo ou -arilo. O composto de fórmula Ili possuindo a estrutura:
é um composto que pode ser utilizado para formar conjugados de fármaco-ligador-ligando para utilização no presente invento.
Os compostos de fórmulas Il-i são úteis para tratamento ou prevenção do cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa num animal.
5.4 A UNIDADE DE LIGADOR A unidade de Ligador do Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando liga a unidade de Fármaco e a unidade de Ligando e tem a fórmula:
onde: -A- é uma unidade de Extensor; a é 1; cada -W- é independentemente uma unidade de Aminoácido; w é independentemente um inteiro que varia de 2 a 12; -Y- é uma unidade de Espaçador autodestrutivo; e y é 1 ou 2.
5.4.1 A UNIDADE DE EXTENSOR A unidade de Extensor (-A-) liga uma unidade de Ligando a uma unidade de Aminoácido (-W-). Em relação a este aspeto, um Ligando (L) possui um grupo funcional que pode formar uma ligação com um grupo funcional de um Extensor. Grupos funcionais úteis que podem estar presentes num ligando, quer naturalmente quer através de manipulação química, incluem sulfidrilo (-SH), amino, hidroxilo, carboxi, o grupo hidroxilo anomérico de um carboidrato e carboxilo. Grupos funcionais de Ligando preferidos são sulfidrilo e amino. Podem ser gerados grupos sulfidrilo por redução de uma ligação dissulfureto intramolecular de um Ligando. Alternativamente, podem ser gerados grupos sulfidrilo por reação de um grupo amino de uma porção lisina de um Ligando utilizando 2-iminotiolano (reagente de Traut) ou outro reagente gerador de sulfidrilo.
Numa concretização, a unidade de Extensor forma uma ligação com um átomo de enxofre da unidade de Ligando. 0 átomo de enxofre pode ser derivado de um grupo sulfidrilo de um Ligando. A unidade de Extensor tem a fórmula:
5.4.2 A UNIDADE DE AMINOÁCIDO A unidade de Aminoácido (-W-) liga a unidade de Extensor à unidade de Espaçador se a unidade de espaçador -W„- tem a fórmula :
onde R20 é isopropilo e R21 é (CH2) 3NHCONH2.
5.4.3 A UNIDADE DE ESPAÇADOR A unidade de Espaçador (-Y-) liga uma unidade de Aminoácido à unidade de Fármaco. A unidade de Espaçador é autodestrutiva. -Yy- é uma unidade álcool p-aminobenzílico (PAB) (ver Esquemas 2) onde Qm não está presente, i.e. m é 0.
Um Composto do invento contendo uma unidade de Espaçador autodestrutivo pode libertar -D sem a necessidade de um passo de hidrólise separado. -Y- é um grupo PAB que está ligado a -Ww— através do átomo de azoto de amino do grupo PAB, e ligado diretamente a -D através de um grupo carbonato. Sem estar limitado pela teoria, o Esquema 2 ilustra um mecanismo possível de libertação de Fármaco de um grupo PAB que está ligado diretamente a -D através de um grupo carbamato.
Esquema 2
onde Qm não está presente, i.e. m é 0; e p varia de 1 a cerca de 2 0. A unidade de Espaçador (-Yy-) é representada pela Fórmula (X):
(X) onde Qm não está presente, i.e. m é 0;
5.5 A UNIDADE DE FÁRMACO -D é uma unidade de Fármaco possuindo um átomo de azoto que pode formar uma ligação com a unidade de Espaçador quando y = 1 ou 2.
5.6 A UNIDADE DE LIGANDO A unidade de Ligando (L-) é um anticorpo monoclonal que se liga imunoespecificamente ao antigénio CD30. O Ligando liga-se a, complexa com, ou reage com uma porção de uma população de células que se pretende que seja terapeut icamente ou de outro modo biologicamente modificada. A unidade de Ligando atua para entregar a unidade de Fármaco à particular população de células alvo com as quais a unidade de Ligando reage. Estes Ligandos incluem anticorpos a todo o comprimento, e fragmentos de anticorpos.
Uma unidade de Ligando forma uma ligação com uma Unidade de Extensor de um Ligador. Uma unidade de Ligando pode formar uma ligação com uma unidade de Ligador através de um heteroátomo do Ligando. Heteroátomos que podem estar presentes numa unidade de Ligando incluem enxofre (numa concretização, a partir de um grupo sulfidrilo de um Ligando), oxigénio (numa concretização, a partir de um grupo carbonilo, carboxilo ou hidroxilo de um Ligando) e azoto (numa concretização, a partir de um grupo amino primário ou secundário de um Ligando). Estes heteroátomos podem estar presentes no Ligando no estado natural do Ligando, por exemplo um anticorpo de ocorrência natural, ou podem ser introduzidos no Ligando através de modificação química.
Numa concretização preferida, um Ligando possui um grupo sulfidrilo e o Ligando liga-se à unidade de Ligador através do átomo de enxofre do grupo sulfidrilo.
Noutra concretização, o Ligando pode ter um ou mais carboidrato grupos que podem ser modificados quimicamente para terem um ou mais grupos sulfidrilo. A unidade de Ligando liga-se à unidade de Extensor através do átomo de enxofre do grupo sulfidrilo.
Ainda noutra concretização, o Ligando pode ter um ou mais grupos carboidrato que podem ser oxidados para proporcionar um grupo aldeído (-CHO) (ver Laguzza, et al., J. Med. Chem. 1989, 32 (3), 548-55) . 0 aldeído correspondente pode formar uma ligação com um local reativo num Extensor. Locais reativos num Extensor que podem reagir com um grupo carbonilo num Ligando incluem, mas não estão limitados a, hidrazina e hidroxilamina. São também divulgados Ligandos de proteína, polipéptido ou péptido não imunorreativos que incluem transferrina, fatores de crescimento epidérmico ("EGF"), bombesina, gastrina, péptido libertador de gastrina, fator de crescimento derivado de plaquetas, IL-2, IL-6, fatores de crescimento transf ormantes ("TGF"), tais como TGF- e TGF- , fator de crescimento de vacínia ("VGF"), insulina e fatores de crescimento de semelhantes a insulina I e II, lectinas e apoproteína de lipoproteína de baixa densidade.
Ligandos de anticorpo monoclonal úteis são populações homogéneas de anticorpos contra o antigénio CD30. Um anticorpo monoclonal (mAb) para o antigénio de interesse pode ser preparado utilizando qualquer técnica conhecida na especialidade que proporcione a produção de moléculas de anticorpo por linhas de células contínuas em cultura. Estas incluem, mas não estão limitados a, a técnica de hibridoma descrita originalmente por Kohler e Milstein (1975, Nature 256, 495-497), a técnica de hibridoma de células B humanas (Kozbor et al., 1983, Immunology Today 4: 72), e a técnica de hibridoma de EBV (Cole et al., 1985, Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, Inc., págs. 77-96) . Estes anticorpos podem ser de qualquer classe de imunoqlobulina incluindo IgG, IgM, IgE, IgA e IgD e qualquer sua subclasse. 0 hibridoma que produz os mAb de utilização neste invento pode ser cultivado in vitro ou in vivo.
Ligandos de anticorpo monoclonal úteis incluem, mas não estão limitados a, anticorpos monoclonais humanos ou anticorpos monoclonais quiméricos de humano-ratinho (ou outras espécies). Anticorpos monoclonais humanos podem ser produzidos por qualquer de numerosas técnicas conhecidas na especialidade (e.g., Teng et al. , 1983, Proc. Natl. Acad Sei. U.S.A. 80, 7308-7312; Kozbor et al. , 1983, Immunology Today 4, 72-79; e Olsson et al., 1982, Meth. Enzymol. 92, 3-16). O Ligando pode também ser um anticorpo biespecifico. São conhecidos na especialidade métodos para a produção de anticorpos biespecificos. A produção tradicional de anticorpos biespecificos a todo o comprimento é baseada na coexpressão de dois pares de cadeia pesada-cadeia leve de imunoglobulina, onde as duas cadeias têm especificidades diferentes (Milstein et al., 1983, Nature 305:537-539). Por causa da mescla aleatória de cadeias pesada e leve de imunoglobulina, estes hibridomas (quadromas) produzem uma mistura potencial de 10 moléculas de anticorpo diferentes, das quais apenas uma tem a estrutura biespecifica correta. A purificação da molécula correcta, que é usualmente realizada utilizando passos de cromatografia de afinidade, é bastante trabalhosa, e os rendimentos de produto são baixos. Procedimentos similares são divulgados na Publicação Internacional N.2 WO 93/08829 e em Traunecker et al., EMBO J. 1_0:3 655-3 65 9 (1991) .
De acordo com uma abordagem diferente e mais preferida, domínios variáveis de anticorpo com as especificidades de ligação (locais de combinação anticorpo-antigénio) desejadas são fundidos com sequências de domínio constante de imunoglobulina. A fusão é preferivelmente com um domínio constante de cadeia pesada de imunoglobulina, compreendendo pelo menos parte das regiões de charneira, CH2 e CH3. Prefere- se ter a primeira região constante de cadeia pesada (CHI), contendo o local necessário para ligação da cadeia leve, presente em pelo menos uma das fusões. Os ADN codificando as fusões de cadeia pesada de imunoglobulina e, se desejado, da cadeia leve de imunoglobulina, são inseridos em vetores de expressão separados e são cotransfetados num organismo hospedeiro adequado. Isto proporciona uma grande flexibilidade no ajustamento das proporções mútuas dos três fragmentos de polipéptido em concretizações onde proporções desiguais das três cadeias de polipéptido utilizadas na construção proporcionam os rendimentos ótimos. No entanto, é possível inserir as sequências de codificação para duas ou para todas as três cadeias de polipéptido num vetor expressão quando a expressão de pelo menos duas cadeias de polipéptido em proporções iguais resulta em rendimentos elevados ou quando as proporções não têm qualquer significado particular.
Numa concretização preferida desta abordagem, os anticorpos biespecíficos possuem uma cadeia pesada de imunoglobulina híbrida com uma primeira especificidade de ligação num ramo, e um par de cadeia pesada-cadeia leve de imunoglobulina híbrida (proporcionando uma segunda especificidade de ligação) no outro ramo. Esta estrutura assimétrica facilita a separação do composto biespecífico desejado de combinações de cadeias de imunoglobulina indesejadas, uma vez que a presença de uma cadeia leve de imunoglobulina em apenas uma metade da molécula biespecífica proporciona um modo de separação fácil (Publicação Internacional N.2 WO 94/04690).
Para detalhes adicionais para gerar anticorpos biespecíficos ver, por exemplo, Suresh et ai., Methods in Enzymology, 1986, 121:210. Utilizando estas técnicas, podem-se preparar Ligandos de anticorpo biespecíficos para utilização no tratamento ou prevenção de uma doença como aqui definido. São também descritos anticorpos bifuncionais na Publicação de Patente Europeia N.2 EPA 0 105 360. Como divulgado nesta referência, anticorpos híbridos ou bifuncionais podem ser obtidos ou biologicamente, i.e., por técnicas de fusão celular, ou quimicamente, especialmente com agentes de reticulação ou reagentes de formação de pontes de dissulfureto, e podem compreender anticorpos inteiros ou seus fragmentos. Métodos para obtenção destes anticorpos híbridos são divulgados por exemplo, na Publicação Internacional WO 83/03679, e na Publicação de Patente Europeia N.2 EPA 0 217 577. O Ligando pode ser um fragmento, derivado ou análogo funcionalmente ativos de um anticorpo que imunoespecificamente se liga ao antigénio CD30. Em relação a este aspeto, "funcionalmente ativo" significa que o fragmento, derivado ou análogo é capaz de induzir anticorpos anti-anti-idiotipo que reconhecem o mesmo antigénio que o anticorpo a partir do qual o fragmento, derivado ou análogo é derivado reconheceu. Especificamente, numa concretização preferida, a antigenicidade do idiotipo da molécula de imunoglobulina pode ser melhorada por deleção das sequências de estrutura e CDR que são C-terminais em relação à sequência de CDR que especificamente reconhece o antigénio. Para determinar que sequências de CDR se ligam ao antigénio, péptidos sintéticos contendo as sequências de CDR podem ser utilizadas em ensaios de ligação com o antigénio por qualquer método de ensaio de ligação conhecido na especialidade (e.g., o ensaio de núcleo BIA)
Outros Ligandos úteis incluem fragmentos de anticorpos tais como, mas não limitados a, fragmentos F(ab')2, que contêm a região variável, a região constante de cadeia leve e o domínio CHI da cadeia pesada, que podem ser produzidos por digestão com pepsina da molécula anticorpo, e fragmentos Fab, que podem ser gerados por redução das pontes dissulfureto dos fragmentos F(ab')2. Outros Ligandos úteis são dímeros de cadeia pesada e cadeia leve de anticorpos, ou qualquer seu fragmento mínimo tal como Fv ou anticorpos de cadeia simples (SCA) (e.g., como descrito na Patente dos E.U.A. 4946778; Bird, 1988, Science 242:423-42; Huston et al., 1988, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 85:5879-5883; e Ward et al., 1989, Nature 334:544-54), ou qualquer outra molécula com a mesma especificidade como o anticorpo.
Adicionalmente, anticorpos recombinantes, tais como anticorpos monoclonais quiméricos e humanizados, compreendendo porções tanto humanas como não humanas, que podem ser produzidos utilizando técnicas padrão de ADN recombinante, são Ligandos úteis. Um anticorpo quimérico é uma molécula na qual diferentes porções são obtidas a partir de diferentes espécies animais, tais como aquelas possuindo uma região variável derivada de uma região constante de imunoglobulina humana e monoclonal murina (ver, e.g., Cabilly et al., Patente dos E.U.A. N.2 4816567; e Boss et al. , Patente dos E.U.A. N.2 4816397). Anticorpos humanizados são moléculas de anticorpo a partir de uma espécie não humana possuindo uma ou mais regiões determinantes de complementaridade (CDR) a partir da espécie não humana e uma região de estrutura a partir de uma molécula de imunoglobulina humana (ver, e.g., Queen, Patente dos E.U.A. N.2 5585089) . Estes anticorpos monoclonais quiméricos e humanizados podem ser produzidos por técnicas de ADN recombinantes conhecidas na especialidade, por exemplo utilizando métodos descritos na Publicação Internacional N.2 WO 87/02671; Publicação de Patente Europeia N.2 184187; Publicação de Patente Europeia N.2 171496; Publicação de Patente Europeia N.2 173494; Publicação Internacional N.2 WO 86/01533; Patente dos E.U.A. N.2 4816567; Publicação de Patente Europeia N.2 125023; Berter et al. , 1988, Science 240:1041-1043; Liu et al. , 1987, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 84:3439-3443; Liu et al., 1987, J. Immunol. 139:3521-3526; Sun et al., 1987, Proc. Natl. Acad Sei. USA 84:214-218; Nishimura et al., 1987, Cane. Res. 47:999-1005; Wood et al., 1985, Nature 314:446-449; e Shaw et al., 1988, J. Natl. Cancer Inst. 80:1553-1559; Morrison, 1985, Science 229:1202-1207; Oi et al., 1986, BioTechniques 4:214; Patente dos E.U.A. 5225539; Jones et al., 1986, Nature 321:552-525; Verhoeyan et al. (1988) Science 239:1534; e Beidler et al., 1988, J. Immunol. 141:4053-4060 .
Anticorpos completamente humanos são particularmente desejáveis para Ligandos. Estes anticorpos podem ser produzidos utilizando ratinhos transgénicos que são incapazes de expressarem genes de imunoglobulina endógenos das cadeias pesada e leve, mas que podem expressar genes humanos das cadeias pesada e leve. Os ratinhos transgénicos são imunizados do modo normal com um antigénio selecionado, e.g., a totalidade ou uma porção de um polipéptido do invento. Anticorpos monoclonais dirigidos contra o antigénio podem ser obtidos utilizando tecnologia de hibridoma convencional. Os transgenes de imunoglobulina humana alojados pelos ratinhos transgénicos rearranjam-se durante a diferenciação de células B, e subsequentemente sofrem comutação de classe e mutação somática. Assim, utilizando uma tal técnica, é possível produzir anticorpos IgG, IgA, IgM e IgE terapeuticamente úteis. Para uma visão geral desta tecnologia para produção de anticorpos humanos, ver Lonberg e Huszar (1995, Int. Rev. Immunol. 13:65-93). Para uma discussão detalhada desta tecnologia para produção de anticorpos humanos e de anticorpos monoclonais humanos e protocolos para produção destes anticorpos, ver, e.g., Patente dos E.U.A. 5625126, Patente dos E.U.A. 5633425, Patente dos E.U.A. 5569825, Patente dos E.U.A. 5661016 e Patente dos E.U.A. 5545806. Outros anticorpos humanos podem ser obtidos comercialmente, por exemplo, na Abgenix, Inc. (Freemont, CA) e na Genphann (San Jose, CA) .
Anticorpos completamente humanos que reconhecem um epítopo selecionado podem ser gerados utilizando uma técnica referida como "seleção guiada". Nesta abordagem, um anticorpo monoclonal não humano selecionado, e.g., um anticorpo de ratinho, é utilizado para guiar a seleção de um anticorpo completamente humano que reconhece o mesmo epítopo (Jespers et al. (1994) Biotechnology 12:899-903).
Noutras concretizações, o Ligando é uma proteína de fusão de um anticorpo, ou um seu fragmento funcionalmente ativo, por exemplo no qual o anticorpo está fundido através de uma ligação covalente (e.g., uma ligação peptídica), quer no terminal N quer no terminal C, com uma sequência de aminoácidos de outra proteína (ou sua porção, preferivelmente uma porção da proteína de pelo menos 10, 20 ou 50 aminoácidos) que não é o anticorpo. Preferivelmente, o anticorpo ou seu fragmento está ligado covalentemente à outra proteína no terminal N do domínio constante.
Os anticorpos de Ligando incluem análogos e derivados que são modificados, i.e. pela ligação covalente de qualquer tipo de molécula desde que esta ligação covalente permita ao anticorpo manter a sua imunoespecificidade de ligação de antigénio. Por exemplo, mas não como limitação, os derivados e análogos dos anticorpos incluem aqueles que foram adicionalmente modificados, e.g., por glicosilação, acetilação, peguilação, fosforilação, amidação, derivatização por grupos protetores/bloqueadores conhecidos, clivagem proteolitica, ligação a uma unidade de Ligando celular ou outra proteína, etc. Pode ser realizada qualquer uma de numerosas modificações químicas por técnicas conhecidas, incluindo, mas não limitadas a clivagem química específica, acetilação, formilação, síntese metabólica de tunicamicina, etc. Adicionalmente, o análogo ou derivado pode conter um ou mais aminoácidos não naturais.
Os anticorpos de Ligando incluem anticorpos possuindo modificações (e.g., substituições, deleções ou adições) em resíduos aminoácido que interagem com recetores Fc. Em particular, os anticorpos de Ligando incluem anticorpos possuindo modificações em resíduos aminoácido identificados como envolvidos na interação entre o domínio Fc e o recetor FcRn (ver, e.g., Publicação Internacional N.2 WO 97/34631). Anticorpos imunoespecíficos para um antigénio de célula de cancro podem ser obtidos comercialmente, por exemplo, na Genentech (San Francisco, CA) ou produzidos por qualquer método conhecido de um perito na especialidade tal como, e.g., síntese química ou técnicas de expressão recombinante. A sequência de nucleótidos codificando anticorpos imunoespecíficos para um antigénio de célula de cancro pode ser obtida, e.g., na base de dados GenBank ou numa base de dados idêntica, nas publicações da literatura ou por clonagem e sequenciação de rotina.
Numa concretização específica, anticorpos anti-CD30 conhecidos para o tratamento ou prevenção de cancro são utilizados de acordo com as composições e métodos do invento. Anticorpos imunoespecíficos para o antigénio CD30 podem ser obtidos comercialmente ou produzidos por qualquer método conhecido de um perito na especialidade tal como, e.g., síntese química ou técnicas de expressão recombinante. A sequência de nucleótidos codificando anticorpos imunoespecíficos para o antigénio CD30 pode ser obtida, e.g., na base de dados GenBank ou numa base de dados idêntica, nas publicações da literatura ou por clonagem e sequenciação de rotina.
Os mAb contra o antigénio CD30 como o AC10 (Bowen, M. A., Olsen, K.J., Cheng, L., Avila, D., e Podack, E.R. "Functional effects of CD30 on a large granular linfoma cell line YT" J. Immunol., 151, 5896-5906, 1993) são úteis no invento. Muitos outros anticorpos de internalização que se ligam a antigénios associados a tumores são conhecidos, e foram revistos (Franke, A.E., Sievers, E.L., e Scheinberg, D.A., "Cell surface receptor-targeted therapy of acute myeloid leukemia: a review" Cancer Biother. Radiopharm. 2000, 15, 459-76; Murray, J.L., "Monoclonal antibody treatment of solid tumors: a coming of age" Semin. Oncol. 2000, 27, 64-70; Breitling, F., e Dubel, S., Recombinant Antibodies, John Wiley, and Sons, New York, 1998).
Os anticorpos adequados para utilização no invento podem ser produzidos por qualquer método conhecido na especialidade para a síntese de anticorpos, em particular, por síntese química ou por expressão recombinante, e são preferivelmente produzidos por técnicas de expressão recombinante.
5.6.1 PRODUÇÃO DE ANTICORPOS RECOMBINANTES
Anticorpos de Ligando do invento podem ser produzidos utilizando qualquer método conhecido na especialidade como útil para a síntese de anticorpos, em particular, por síntese química ou por expressão recombinante, e são produzidos preferivelmente por técnicas de expressão recombinante. A expressão recombinante dos anticorpos de Ligando, ou seu fragmento, derivado ou análogo, requer a construção de um ácido nucleico que codifica o anticorpo. Se a sequência de nucleótidos do anticorpo é conhecida, um ácido nucleico codificando o anticorpo pode ser montado a partir de oligonucleótidos sintetizados quimicamente (e.g., como descrito em Kutmeier et al. , 1994, BioTechniques 17:242), o que envolve a síntese de oligonucleótidos sobrepostos contendo porções da sequência codificando o anticorpo, hibridização e ligação desses oligonucleótidos, e depois amplificação dos oligonucleótidos ligados por PCR.
Alternativamente, uma molécula de ácido nucleico codificando um anticorpo pode ser gerada a partir de uma fonte adequada. Se não estiver disponível um clone contendo o ácido nucleico codificando o anticorpo particular, mas se a sequência do anticorpo é conhecida, um ácido nucleico codificando o anticorpo pode ser obtido a partir de uma fonte adequada (e.g., uma biblioteca de ADNc de anticorpo, ou biblioteca de ADNc gerada a partir de qualquer tecido ou células expressando a imunoglobulina) por amplificação de PCR utilizando iniciadores sintéticos hibridizáveis com as extremidades 3' e 5' da sequência ou por clonagem utilizando uma sonda de oligonucleótido específica para a sequência de génica particular.
Anticorpos específicos para o antigénio CD30 podem ser gerados por qualquer método conhecido na especialidade, por exemplo, por geração de anticorpos monoclonais, e.g., como descrito por Kohler e Milstein (1975, Nature 256:495-497) ou, como descrito por Kozbor et al. (1983, Immunology Today 4:72) ou Cole et al. (1985 em Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, Inc., págs. 77-96). Alternativamente, urn clone codificando pelo menos a porção Fab do anticorpo pode ser obtido por rastreio de bibliotecas de expressão de Fab (e.g., como descrito em Huse et al., 1989, Science 246:1275-1281) quanto a clones de fragmentos Fab que se ligam a um antigénio específico ou por rastreio de bibliotecas de anticorpo (ver, e.g., Clackson et al., 1991, Nature 352:624; Hane et al., 1997 Proc. Natl. Acad Sei. USA 94:4937).
Uma vez obtida uma sequência de ácido nucleico codificando pelo menos o domínio variável do anticorpo, esta pode ser introduzida num vetor contendo a sequência de nucleótidos codificando as regiões constantes do anticorpo (ver, e.g., Publicação Internacional N.2 WO 86/05807; Publicação Internacional N.2 WO 89/01036; e Patente dos E.U.A. N.2 5122464). Estão disponíveis vetores contendo a cadeia leve ou pesada completa que permitem a expressão de uma molécula de anticorpo completa. Depois, o ácido nucleico codificando o anticorpo pode ser utilizado para introduzir as substituições ou deleções de nucleótidos necessárias para substituir (ou eliminar) o um ou mais resíduos cisteína da região variável que participam numa ligação dissulfureto intracadeia com um resíduo aminoácido que não contém um grupo sulfidrilo. Estas modificações podem ser realizadas por qualquer método conhecido na especialidade para a introdução de mutações ou deleções especificas numa sequência de nucleótidos, por exemplo, mas não limitado a, mutagénese química e mutagénese dirigida in vitro (Hutchinson et al.r 1978, J. Biol. Chem. 253:6551).
Adicionalmente, podem-se utilizar técnicas desenvolvidas para a produção de "anticorpos quiméricos" (Morrison et ai., 1984, Proc. Natl. Acad Sei. 81:851-85.5; Neuberger et ai., 1984, Nature 312:604-608; Takeda et ai., 1985, Nature 314:452-454) por montagem (splicing) de genes de uma molécula de anticorpo de ratinho de especificidade por um antigénio apropriado em conjunto com genes de uma molécula de anticorpo humano de atividade biológica apropriada. Um anticorpo quimérico é uma molécula na qual diferentes porções são derivadas de espécies animais diferentes, tais como aquelas possuindo uma região variável derivada de um anticorpo monoclonal murino e uma região constante de imunoglobulina humana, e.g., anticorpos humanizados.
Alternativamente, técnicas descritas para a produção de anticorpos de cadeia simples (Patente dos E.U.A. 4694778; Bird, 1988, Science 242:423-42; Huston et ai., 1988, Proc. Natl. Acad Sei. USA 8 5:587 9-58 83; e Ward et ai., 1989, Nature 334:544-54) podem ser adaptadas para produzir anticorpos de cadeia simples. Anticorpos de cadeia simples são formados por ligação de fragmentos de cadeia pesada e leve da região Fv através de uma ponte de aminoácidos, resultando num polipéptido de cadeia de simples. Podem também ser utilizadas técnicas para a montagem de fragmentos Fv funcionais em E. coli (Skerra et ai., 1988, Science 242:1038-1041).
Fragmentos de anticorpo que reconhecem epítopos específicos podem ser gerados por técnicas conhecidas. Por exemplo, estes fragmentos incluem, mas não estão limitados a, os fragmentos F(ab')2 que podem ser produzidos por digestão da molécula de anticorpo com pepsina e os fragmentos Fab que podem ser gerados por redução das pontes de dissulfureto dos fragmentos F(ab')2.
Uma vez obtida uma sequência de ácido nucleico codificando um anticorpo de Ligando, o vetor para a produção do anticorpo pode ser produzido por tecnologia de ADN recombinante utilizando técnicas bem conhecidas na especialidade. Métodos que são bem conhecidos dos peritos na especialidade podem ser utilizados para construir vetores de expressão contendo as sequências de codificação de anticorpo e sinais de controlo de transcrição e tradução apropriados. Estes métodos incluem, por exemplo, técnicas de ADN recombinante in vitro, técnicas de síntese, e recombinação genética in vivo. Ver, por exemplo, as técnicas descritas em Sambrook et ai. (1990, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 2·“ Ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY) e Ausubel et al. (eds., 1998, Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, NY).
Um vetor de expressão compreendendo a sequência de nucleótidos de um anticorpo ou a sequência de nucleótidos de um anticorpo pode ser transferido para uma célula hospedeira por técnicas convencionais (e.g., electroporação, transfecção lipossómica e precipitação com fosfato de cálcio), e as células transfectadas são depois cultivadas por técnicas convencionais para produzir o anticorpo. Em concretizações específicas, a expressão do anticorpo é regulada por um promotor constitutivo, induzível ou específico de tecido.
As células hospedeiras utilizadas para expressar o anticorpo de Ligando recombinante podem ser ou células bacterianas tais como Escherichia coli, ou, preferivelmente, células eucarióticas, especialmente para a expressão de moléculas de imunoglobulina recombinante inteiras. Em particular, células de mamífero, tais como células de ovário de hamster chinês (CHO), em conjunto com um vetor tal como o elemento promotor de gene precoce intermédio principal de citomegalovírus de humano, são um sistema de expressão eficaz para imunoglobulinas (Foecking et al. , 198, Gene 45:101; Cockett et al., 1990, BioTechnology 8:2).
Uma variedade de sistemas de vetor de expressão em hospedeiro pode ser utilizada para expressar os Ligandos de imunoglobulina. Estes sistemas de expressão em hospedeiro representam veículos pelos quais as sequências de codificação do anticorpo podem ser produzidas e subsequentemente purificadas, mas representam também células que, quando transformadas ou transfectadas com as sequências de codificação de nucleótidos apropriadas, podem expressar uma molécula de imunoglobulina de Ligando in situ. Estas incluem, mas não estão limitados a, microrganismos tais como bactérias (e.g.f E. coli e B. subtilis) transformadas com vetores de expressão recombinantes de ADN de bacteriófago, ADN de plasmideo ou ADN de cosmideo contendo sequências de codificação de imunoglobulina; levedura (e.g., Saccharomyces, Pichia) transformada com vetores expressão de levedura recombinantes contendo sequências de codificação de imunoglobulina; sistemas de células de inseto com vetores de expressão de virus recombinantes (e.g., baculovirus) contendo as sequências de codificação de imunoglobulina; sistemas de células de planta infetadas com vetores de expressão de virus recombinantes (e.g., virus do mosaico da couve-flor (CaMV) e virus do mosaico do tabaco (TMV)) ou transformadas com vetores de expressão de plasmideo recombinantes (e.g., plasmideo Ti) contendo sequências de codificação de imunoglobulina; ou sistemas de células de mamífero (e.g., células COS, CHO, BH, 293, 293T, 3T3) alojando construções de expressão recombinantes contendo promotores obtidos a partir do genoma de células de mamífero (e.g., promotor de metalotioneina) ou a partir de vírus de mamífero (e.g., o promotor tardio de adenovirus; o promotor 7.5K de vírus vacínia).
Em sistemas bacterianos, podem ser selecionados vantajosamente vários vetores de expressão dependendo da utilização pretendida para o anticorpo que está a ser expresso. Por exemplo, quando se pretende produzir uma grande quantidade de uma tal proteína, poderão ser desejáveis vetores que dirigem a expressão de níveis elevados de produtos de proteína de fusão que são facilmente purificados. Estes vetores incluem, mas não estão limitados a, o vetor de expressão de E. coli pUR278 (Ruther et ai., 1983, EMBO J. 2:1791), no qual a sequência de codificação de anticorpo pode ser ligada individualmente no vetor em moldura (in frame) com a região de codificação lac Z de modo a produzir uma proteína de fusão; vetores pIN (Inouye & Inouye, 1985, Nucleic Acids Res. 13:3101-3109; Van Heeke & Schuster, 1989, J. Biol. Chem. 24:550 5509); e outros. Podem também ser utilizados vetores pGEX para expressar polipéptidos estranhos como proteínas de fusão com glutationa-S-transferase (GST). Em geral, estas proteínas de fusão são solúveis e podem ser facilmente purificadas a partir de células lisadas por adsorção e ligação a uma matriz de glutationa-pérolas de agarose seguindo-se eluição na presença de glutationa livre. Os vetores pGEX são desenhados para incluir locais de clivagem de protease de fator Xa ou trombina tal gue o produto génico alvo clonado possa ser libertado a partir da porção GST.
Num sistema de inseto, o vírus de poliedrose nuclear de Autographa californica (AcNPV) ou o vírus análogo de Drosophila melanogaster é utilizado como um vetor para expressar genes estranhos. 0 vírus desenvolve-se em células de Spodoptera frugiperda. A seguência de codificação de anticorpo pode ser clonada individualmente em regiões não essenciais (por exemplo o gene de poliedrina) do vírus e colocada sob controlo de um promotor de AcNPV (por exemplo o promotor de poliedrina).
Em células hospedeiras de mamífero, podem ser utilizados vários sistemas de expressão de base virai. Em casos onde se utiliza adenovirus como um vetor de expressão, a sequência de codificação de anticorpo de interesse pode ser ligada a um complexo de controlo de transcrição/tradução de adenovirus, e.g., o promotor tardio e a sequência líder tripartida. Este gene quimérico pode depois ser inserido no genoma de adenovirus por recombinação in vitro ou in vivo. A inserção numa região não essencial do genoma virai (e.g., região El ou E3) resulta num vírus recombinante que é viável e capaz de expressar a molécula de imunoglobulina em hospedeiros infetados (e.g., ver Logan & Shenk, 1984, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 81:355-359). Podem também ser requeridos sinais de iniciação específicos para tradução eficiente de sequências de codificação de anticorpo inseridas. Estes sinais incluem o codão de iniciação ATG e sequências adjacentes. Adicionalmente, o codão de iniciação tem de estar em fase com a moldura de leitura da sequência de codificação desejada para assegurar a tradução de toda a inserção. Estes sinais de controlo de tradução e codões de iniciação exógenos podem ser de várias origens, tanto naturais como sintéticas. A eficiência de expressão pode ser melhorada pela inclusão de elementos apropriados de intensificador de transcrição, terminadores de transcrição, etc. (ver Bittner et ai., 1987, Methods in Enzymol. 153:51-544) .
Adicionalmente, uma estirpe de células hospedeiras pode ser escolhida para modular a expressão das sequências inseridas, ou modificar e processar o produto génico do modo especifico desejado. Estas modificações (e.g., glicosilação) e processamento (e.g., clivagem) de produtos de proteína podem ser importantes para a função da proteína. Diferentes células hospedeiras têm mecanismos característicos e específicos para o processamento pós-tradução e modificação de proteínas e produtos génicos. Linhas de células ou sistemas de hospedeiro apropriados podem ser escolhidos para assegurar a modificação e processamento corretos da proteína estranha expressa. Para este propósito, podem-se utilizar células hospedeiras eucarióticas que possuem a maquinaria celular para o processamento apropriado do transcrito primário, glicosilação e fosforilação do produto de gene. Estas células hospedeiras de mamífero incluem, mas não estão limitadas a, CHO, VERY, BH, Hela, COS, MDCK, 293, 293T, 3T3, WI38, BT483, Hs578T, HTB2, BT20 e T47D, CRL7030 e Hs578Bst.
Para produção de longo prazo de proteínas recombinantes com um elevado rendimento, prefere-se a expressão estável. Por exemplo, podem-se produzir por engenharia linhas de células que expressam estavelmente um anticorpo. Em vez de se utilizarem vetores de expressão que contêm origens de replicação virais, células hospedeiras podem ser transformadas com ADN controlado por elementos de controlo de expressão apropriados (e.g., promotor, intensificador, sequências, terminadores de transcrição, locais de poliadenilação, etc.), e um marcador seleccionável. Após a introdução do ADN estranho, as células produzidas por engenharia podem ser deixadas crescer durante 1-2 dias num meio enriquecido, e depois são mudadas para um meio seletivo. 0 marcador seleccionável no plasmídeo recombinante confere resistência à seleção e permite às células integrarem estavelmente o plasmídeo nos seus cromossomas e crescerem para formar foci que por sua vez podem ser clonados e expandidos em linhas de células. Este método pode ser vantajosamente utilizado para produzir por engenharia linhas de células que expressam o anticorpo. Estas linhas de células produzidas por engenharia podem ser particularmente úteis no rastreio e avaliação de antigénios de tumor que interagem diretamente ou indiretamente com o Ligando de anticorpo.
Podem-se utilizar vários sistemas de seleção, incluindo mas não limitados aos genes de virus herpes simplex de timidina-quinase (Wigler et al., 1977, Cell 11:223), hipoxantina-guanina-fosforribosiltransferase (Szybalska & Szybalski, 192, Proc. Natl. Acad Sei. USA 48:202) e adenina-fosforribosiltransferase (Lowy et al., 1980, Cell 22:817) que podem ser utilizados em células tk-, hgprt- ou aprt-, respetivamente. Também, a resistência antimetabolito pode ser utilizada como a base de seleção para os genes seguintes: dhfr, que confere resistência a metotrexato (Wigler et al., 1980, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 77:357; O'Hare et al., 1981, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 78:1527); gpt, que confere resistência a ácido micofenólico (Mulligan & Berg, 1981, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78:2072); neo, que confere resistência ao aminoglicósido G-418 (Clinical Pharmacy 12:488-505; Wu e Wu, 1991, Biotherapy 3:87-95; Tolstoshev, 1993, Ann. Rev. Pharmacol. Toxicol. 32:573-596; Mulligan, 1993, Science 260:926-932; e Morgan e Anderson, 1993, Ann. Rev. Biochem. 62:191-217; Maio, 1993, TIB TECH 11 (5):155-215) e hygro, que confere resistência a higromicina (Santerre et al., 1984, Gene 30:147) . Métodos habitualmente conhecidos na especialidade da tecnologia de ADN recombinante que podem ser utilizados são descritos em Ausubel et al. (eds., 1993, Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley & Sons, NY; Kriegler, 1990, Gene Transfer and Expression, A Laboratory Manual, Stockton Press, NY; e nos Capítulos 12 e 13, Dracopoli et al. (eds), 1994, Current Protocols in Human Genetics, John Wiley & Sons, NY; Colberre-Garapin et al., 1981, J. Mol. Biol. 150:1).
Os níveis de expressão de um anticorpo podem ser aumentados por amplificação de vetor (para uma revisão, ver Bebbington e Hentschel, The use of vectors based on gene amplification for the expression of cloned genes in mammalian cells in DNA cloning, Vol. 3. (Academic Press, New York, 1987)). Quando um marcador no sistema de vetor que expressa urn anticorpo é amplificável, um aumento no nivel de inibidor presente na cultura de células hospedeiras aumentará o número de cópias do gene marcador. Uma vez que a região amplificada está associada à sequência de nucleótidos do anticorpo, a produção do anticorpo também aumentará (Crouse et al., 1983, Mol. Cell. Biol. 3:257) . A célula hospedeira pode ser cotransfetada com dois vetores de expressão do invento, o primeiro vetor codificando um polipéptido derivado da cadeia pesada e o segundo vetor codificando um polipéptido derivado da cadeia leve. Os dois vetores podem conter marcadores selecionáveis idênticos que permitem a expressão igual de polipéptidos de cadeia pesada e cadeia leve. Alternativamente, um único vetor pode ser utilizado para codificar ambos os polipéptidos de cadeia pesada e leve. Nestas situações, a cadeia leve deverá ser colocada antes da cadeia pesada para evitar um excesso de cadeia pesada livre tóxica (Proudfoot, 1986, Nature 322:52; Kohler, 1980, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:2197) . As sequências de codificação para as cadeias pesada e leve podem compreender ADNc ou ADN genómico.
Após o anticorpo ter sido expresso recombinantemente, pode ser purificado utilizando qualquer método conhecido na especialidade para purificação de um anticorpo, por exemplo, por cromatografia (e.g., permuta iónica, afinidade, particularmente por afinidade para o antigénio específico após Proteína A, e cromatografia de coluna de tamanhos), centrifugação, solubilidade diferencial ou por qualquer outra técnica padrão para a purificação de proteínas.
5.7 SÍNTESE DOS COMPOSTOS DO INVENTO
Esta secção contém informação geral sobre a síntese de conjugados ligando-fármaco e seus intermediários. A sua divulgação é mais ampla que o âmbito do presente invento conforme definido nas reivindicações e inclui informação sobre compostos análogos a compostos úteis no presente invento.
Como descrito com mais detalhes abaixo, os Compostos do invento são convenientemente preparados utilizando um Ligador possuindo dois ou mais locais reativos para ligação ao Fármaco e Ligando. Num aspeto do invento, um Ligador possui um Local Reativo que possui um grupo electrófilo que é reativo em relação a um grupo nucleófilo presente num Ligando. Grupos nucleófilos úteis num Ligando incluem mas não estão limitados a, grupos sulfidrilo, hidroxilo a amino. O heteroátomo do grupo nucleófilo de um Ligando é reativo em relação a um grupo electrófilo num Ligador e forma uma ligação covalente com uma unidade de Ligador. 0 grupo electrófilo é um grupo maleimida. 0 grupo electrófilo proporciona um local conveniente para ligação ao Ligando. É também útil como local reativo um grupo funcional carbonato num Ligador que pode reagir com um grupo amino de um Fármaco para formar uma ligação carbamato.
Tipicamente, Fármacos de base peptídica podem ser preparados por formação de uma ligação de péptido entre dois ou mais aminoácidos e/ou fragmentos de péptido. Estas ligações peptídicas podem ser preparadas, por exemplo, de acordo com o método de síntese de fase líquida (ver E. Schroder e K. Lúbke, "The Peptides", volume 1, págs. 76-136, 1965, Academic Press) que é bem conhecido no campo da química de péptidos.
Numa concretização, um Fármaco é preparado por combinação de um equivalente quase estequiométrico de um dipéptido e um tripéptido, preferivelmente numa reação num único vaso sob condições de condensação adequadas. Esta abordagem é ilustrada nos Esquemas 5-7 seguintes. Assim, o tripéptido 6 pode ser preparado como se mostra no Esquema 5, e o dipéptido 9 pode ser preparado como se mostra no Esquema 6. Os dois fragmentos 6 e 9 podem ser condensados para proporcionar um Fármaco 10 como se mostra no Esquema 7. A síntese de um Extensor ilustrativo possuindo um grupo maleimida electrófilo é ilustrada nos Esquemas 8-9. Métodos de síntese gerais úteis para a síntese de um Ligador estão descritos no Esquema 10. O Esquema 11 mostra a construção de uma unidade de Ligador possuindo um grupo val-cit, um grupo maleimida electrófilo e um grupo de Espaçador autodestrutivo PAB. 0 Esquema 12 ilustra a síntese de um Ligador possuindo um grupo phe-lys, um grupo maleimida electrófilo, com e sem o grupo Espaçador autodestrutivo PAB. O Esquema 13 apresenta um esboço geral para a síntese de um Composto de Fármaco-Ligador, enquanto o Esquema 14 apresenta uma via alternativa para a preparação de um Composto de Fármaco-Ligador. 0 Esquema 15 ilustra a síntese de um ligador ramificado contendo um grupo BHMS. 0 Esquema 16 descreve a ligação de um Ligando a um Composto de Fármaco-Ligador para formar um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando, e o Esquema 17 ilustra a síntese de Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando possuindo 2 ou 4 fármacos por Ligando.
Esquema 5
Como ilustrado no Esquema 5, um aminoácido protegido 1 (onde PG representa um grupo protetor de amina, R4 é selecionado entre hidrogénio, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0- (Ci-Cs alquilo) , -arilo, -alquil-arilo, -alquil-(C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo, -alquil-(C3-C8 heterociclo) onde R5 é selecionado entre H e metilo; ou R4 e R5 em conjunto têm a fórmula -(CRaRb)n- onde Ra e Rb são selecionados independentemente entre hidrogénio, -Ci-Cs alquilo e -C3-C8 carbociclo e n é selecionado entre 2, 3, 4, 5 e 6, e formam um anel com o átomo de carbono ao qual estão ligados) é acoplado a éster de t-butilo 2 (onde R6 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; e R7 é selecionado entre hidrogénio, -C1-C8 alquilo, -C3-C8 carbociclo, -0- (Ci-Cs alquilo), -arilo, -alquil-arilo, -alquil-(C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -alquil-(C3-C8 heterociclo)) sob condições de acoplamento adequadas, e.g., na presença de PyBrop e di- isopropiletilamina, ou utilizando DCC (ver, por exemplo, Miyazaki, K. et. al. Chem. Pharm. Buli. 1995, 43(10), 1706-1718) .
Grupos protetores PG adequados e métodos de síntese adequados para proteger um grupo amino com um grupo protetor são bem conhecidos na especialidade. Ver, e.g., Greene, T.W. e Wuts, P.G.M., Protective Groups in Organic Synthesis, 2.a Edição, 1991, John Wiley & Sons. Aminoácidos protegidos preferidos 1 são PG-Ile e, particularmente, PG-Val, enquanto outros aminoácidos protegidos adequados incluem, sem limitação: PG-ciclo-hexilglicina, PG-ciclo-hexilalanina, ácido PG-aminociclopropano-l-carboxílico, ácido PG-aminoisobutírico, PG-fenilalanina, PG-fenilglicina e PG-terc-butilglicina. Z é um grupo protetor preferido. Fmoc é outro grupo protetor preferido. Um éster de t-butilo preferido 2 é o éster de t-butilo de dolaisoleucina. 0 dipéptido 3 pode ser purificado, e.g., utilizando cromatografia, e subsequentemente desprotegido, e.g., utilizando Sb e 10% de Pd-C em etanol quando o PG é benziloxicarbonilo, ou utilizando dietilamina para remoção de um grupo protetor Fmoc. A amina resultante 4 forma rapidamente uma ligação peptídica com um aminoácido 5 (onde R1 é selecionado entre -H, -Ci-Cs alquilo e -C3-C8 carbociclo; e R2 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; ou R1 e R2 em conjunto têm a fórmula -(CRaRb)n- onde Ra e Rb são selecionados independentemente entre -H, -Ci-Cs alquilo e -C3-C8 carbociclo e n é selecionado entre 2, 3, 4, 5 e 6, e formam um anel com o átomo de azoto ao qual estão ligados; e R3 é selecionado entre hidrogénio, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -O- (Ci-Cs alquilo), -arilo, -alquil-arilo, -alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -alquil-(C3-C8 heterociclo) ) . N,N-Dialquilaminoácidos são aminoácidos 5 preferidos, tais como N,N- dimetilvalina disponível comercialmente. Outros N,N-dialquilaminoácidos podem ser preparados por bis-alquilação redutiva utilizando procedimentos conhecidos (ver, e.g., Bowman, R.E, Stroud, H.H J. Chem. Soc., 1950, 1342-1340) . Fmoc-Me-L-Val e Fmoc-Me-L-glicina são dois aminoácidos 5 preferidos úteis para a síntese de derivados de iV-monoalquilo. A amina 4 e o aminoácido 5 reagem para proporcionar o tripéptido 6 utilizando reagente de acoplamento DEPC com trietilamina como a base. A metodologia de acoplamento com DEPC e a metodologia de acoplamento com PyBrop ilustrativas mostradas no Esquema 5 são apresentadas no Procedimento Geral A e no Procedimento Geral B, respetivamente. A metodologia ilustrativa para a desproteção de uma amina protegida com Z através de hidrogenação catalítica é apresentada abaixo no Procedimento Geral C.
Procedimento Geral A: Sintese peptídica utilizando DEPC.
Diluem-se aminoácido ou péptido 4 (1,0 eq.) iV-protegido ou N, iV-dis substituído e uma amina 5 (1,1 eq.) com um solvente orgânico aprótico, tal como diclorometano (0,1 a 0,5 M) . Adiciona-se depois uma base orgânica tal como trietilamina ou di-isopropiletilamina (1,5 eq.), seguindo-se DEPC (1,1 eq.). Agita-se a solução resultante, preferivelmente sob árgon, durante até 12 horas ao mesmo tempo que se monitoriza por HPLC ou TLC. Remove-se o solvente in vacuo à temperatura ambiente, e purifica-se o produto em bruto utilizando, por exemplo, HPLC ou cromatografia de coluna "flash" (coluna de sílica gel) . Combinam-se as frações relevantes e concentram-se in vacuo para proporcionar o tripéptido 6 que é seco sob vácuo de um dia para o outro.
Procedimento Geral B: Sintese peptidica utilizando PyBrop. Dilui-se aminoácido 2 (1,0 eq.), opcionalmente possuindo um grupo protetor de carboxilo, com um solvente orgânico aprótico tal como diclorometano ou DME para proporcionar uma solução com uma concentração entre 0,5 e 1,0 mM, e depois adiciona-se di-isopropiletilamina (1,5 eq.) . Adiciona-se aminoácido 1 (1,1 eq.) protegido com Fmoc ou Z como um sólido numa porção, e depois adiciona-se PyBrop (1,2 eq.) à mistura resultante. A reação é monitorizada por TLC ou HPLC, seguindo-se um procedimento de processamento similar ao descrito no Procedimento Geral A.
Procedimento Geral C: Remoção de Z através de hidrogenação catalítica. Dilui-se aminoácido ou péptido 3 protegido com Z com etanol para proporcionar uma solução com uma concentração entre 0,5 e 1,0 mM num vaso adequado, tal como um balão de fundo redondo de parede espessa. Adiciona-se 10% de paládio sobre carbono (5-10% p/p) e coloca-se a mistura reaccional sob uma atmosfera de hidrogénio. O progresso da reação é monitorizado utilizando HPLC e está geralmente completo em 1-2 h. Filtra-se a mistura reaccional através de um leito de celite pré-lavado e, após filtração, lava-se outra vez a celite com um solvente orgânico polar, tal como metanol. Concentra-se a solução de eluente in vacuo para proporcionar um resíduo que é diluído com um solvente orgânico, preferivelmente tolueno. 0 solvente orgânico é depois removido in vacuo para proporcionar a amina desprotegida 4. A Tabela 1 lista exemplos representativos de tripéptidos intermediários (compostos 39-43) que foram preparados de acordo com o Esquema 5.
Tabela 1
Composto X1 X2 39 Fmoc-iV-Me-L-val L-val 40 Fmoc-iV-Me-L-val L-ile 41 Fmoc-iV-Me-gly L-ile 42 dov L-val 43 dov L-ile adov = N, N-dimetil-L-valina 0 dipéptido 9 pode ser facilmente preparado por condensação do aminoácido modificado Boc-dolaproina 7 (ver, por exemplo, Pettit, G.R., et ai. Synthesis, 1996, 719-725), com (IS,2R)-norefedrina, L- ou D-fenilalaninol, ou com p-acetilfenetilamina sintética 8 (Patente dos E.U.A. 3445518 de Shavel et ai.) utilizando agentes de condensação bem conhecidos da química dos péptidos, tais como, por exemplo, DEPC na presença de trietilamina, como se mostra no Esquema 6. 0
Composto 7 pode também ser condensado deste modo com compostos disponíveis comercialmente para formar dipéptidos de fórmula 9. Exemplos de compostos disponíveis comercialmente úteis para este propósito incluem, mas não estão limitados a, norefedrina, efedrina, e seus estereoisómeros (Sigma-Aldrich), L- ou D-fenilalaninol (Sigma-Aldrich), 2-feniletilamina (Sigma-
Aldrich) , 2-(4-aminofenil)etilamina (Sigma-Aldrich), 1,2- etanodiamina-1,2-difenilo (Sigma-Aldrich), ou 4-(2- aminoetil)fenol (Sigma-Aldrich), ou com p-acetilfenetilamina, aril- e heterociclo-amidas de L-fenilalanina preparadas sinteticamente, l-azidometil-2-feniletilamina (preparada a partir de fenilalaninol de acordo com o procedimento geral descrito em J. Chem. Research (S) , 1992, 391), e l—(4 — hidroxifenil)-2-feniletilamina (Publicação de Patente Europeia N.2 0356035 A2) entre outras.
Esquema 6
onde R8 é selecionado independentemente entre -H, -OH, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo e -O-(Ci-Cs alquilo); R9 é selecionado entre -H e -Ci-Cs alquilo; e R10 é selecionado entre:
onde Z é -O-, -S-, -NH- ou -N (R14) -; R11 é selecionado entre -H, -OH, -NH2, -NHR14, -N (R14) 2, -Ci-Cs alquilo, -C3-C8 carbociclo, -O- (C1-C8 alquilo), -arilo, -Ci-Cs alquil-arilo, -Ci-Cs alquil-(C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil-(C3-C8 heterociclo) ; ou R11 é um átomo de oxigénio que forma uma unidade carbonilo (C=0) com o átomo de carbono ao qual está ligado e um átomo de hidrogénio neste átomo de carbono está substituído por uma das ligações na ligação dupla (C=0); cada R12 é selecionado independentemente entre -arilo e -C3-C8 heterociclo; R13 é selecionado entre -H, -OH, -NH2, -NHR14, - N (R14) 2, -C1-C8 alquilo, -C3-C8 carbociclo, -O-(Ci-Cs alquilo), -arilo, -C1-C8 alquil-arilo, -Ci-Cs alquil- (C3-C8 carbociclo), -C3-C8 heterociclo e -Ci-Cs alquil- (C3-C8 heterociclo); e cada R14 é independentemente -H ou -Ci-Cs alquilo. A Tabela 2 lista exemplos representativos de dipéptidos (Compostos 44-48) que foram preparados de acordo com o Esquema 6.
0 Esquema 7 ilustra um procedimento útil para acoplamento de tripéptido 6 e de dipéptido 9 para formar Fármaco 10. 0 acoplamento de 6 e 9 pode ser efetuado utilizando um ácido forte, e.g. TFA, para facilitar a clivagem de Boc e do éster de t-butilo, do dipéptido 9 e do tripéptido 6, respetivamente, seguindo-se condições de condensação, e.g., utilizando DEPC, ou reagente de acoplamento similar, na presença de excesso de base (trietilamina ou equivalente) para proporcionar Fármaco 10.
Esquema 7
Um procedimento ilustrativo para a síntese de Fármaco 10 como ilustrado no Esquema 7 é apresentado abaixo no Procedimento Geral D. 0 grupo R10 de um Fármaco de fórmula geral 10 pode ser modificado adicionalmente, se desejado, para incluir um grupo funcional que permita que o fármaco seja ligado a um Ligador. Exemplos de modificações úteis para o grupo R10 de um Fármaco 10 incluem mas não estão limitados às transformações químicas descritas abaixo.
Quando R10 é
o grupo hidroxilo de R10 pode ser feito reagir com ácidos carboxílicos ou derivados de ácido carboxílico disponíveis comercialmente ou obtidos sinteticamente, incluindo mas não limitados a ésteres carboxílicos, cloretos de ácido, anidridos e carbonatos para proporcionar os correspondentes ésteres de acordo com métodos bem conhecidos na especialidade. Reagentes de acoplamento, incluindo, mas não limitados a DCC/DMAP e EDCl/HOBt, podem ser úteis naquelas reações de acoplamento entre álcoois e ácidos carboxílicos ou derivados de ácido carboxílico. Numa concretização preferida os ácidos carboxílicos são ácidos arilcarboxílicos substituídos ou não substituídos, por exemplo, ácido 4-aminobenzóico. Assim, a condensação de um grupo hidroxilo do grupo R10 que se mostra acima com ácidos carboxílicos proporciona fármacos da estrutura geral 10 onde R10 é
ou
e onde R11, R12, R14 e R15 são como aqui anteriormente descrito e X é selecionado entre -OH, -NH2 e -NHR14.
Quando R10 é
o grupo azido do fármaco pode ser reduzido (para um exemplo ver J. Chem. Research (S) , 1992, 391) para proporcionar o derivado de amino correspondente onde R10 é
cujo grupo amino pode ser feito reagir com o grupo carboxilo de um ácido carboxílico sob condições gerais de acoplamento de péptido para proporcionar fármacos de estrutura geral 10, onde R10 é
ou
e onde R11, R12, R14 e R15 são como aqui anteriormente descrito e X é selecionado entre -OH, -NH2 e -NHR14. Ácidos carboxílicos úteis no que se refere ao anterior incluem, mas não estão limitados a, ácido 4-aminobenzóico, ácido p-acetilbenzóico e ácido 2-amino-4-tiazolocarboxílico (Tyger Scientific, Inc., Ewing, NJ).
Um grupo amino protegido com Fmoc pode estar presente num grupo R10 contendo amina do Fármaco 10 (e.g., como ilustrado na Tabela 2) . 0 grupo Fmoc é removível da amina protegida utilizando dietilamina (ver Procedimento Geral E como um exemplo ilustrativo abaixo descrito).
Procedimento Geral D: Sintese de fármaco. Dilui-se uma mistura de dipéptido 9 (1,0 eq.) e tripéptido 6 (1 eq.) com um solvente orqânico aprótico, tal como diclorometano, para formar uma solução 1,0 M, depois adiciona-se um ácido forte, tal como ácido trifluoroacético (1/2 v/v) e agita-se a mistura resultante sob uma atmosfera de azoto durante horas a 0°C. A reação pode ser monitorizada utilizando TLC ou, preferivelmente, HPLC. Remove-se o solvente in vacuo e seca-se o resíduo resultante azeotropicamente duas vezes, preferivelmente utilizando tolueno. Seca-se o resíduo resultante sob vácuo elevado durante 12 h e depois dilui-se com um solvente orgânico aprótico, tal como diclorometano. Adiciona-se depois uma base orgânica tal como trietilamina ou di-isopropiletilamina (1,5 eq.), seguindo-se quer PyBrop (1,2 eq.) quer DEPC (1,2 eq.) dependendo da funcionalidade química no resíduo. Monitoriza-se a reação quer por TLC quer HPLC e após estar completa, submete-se a mistura reaccional a um procedimento de processamento similar ou idêntico ao descrito no Procedimento Geral A.
Procedimento Geral E: Remoção de Fmoc utilizando dietilamina. Dilui-se um Fármaco 10 protegido com Fmoc com um solvente orgânico aprótico tal como diclorometano e adiciona-se dietilamina (½ v/v) à solução resultante. Monitoriza-se o progresso da reação por TLC ou HPLC e tipicamente esta está completa em 2 h. Concentra-se a mistura reaccional in vacuo e seca-se o resíduo resultante azeotropicamente, preferivelmente utilizando tolueno, e depois seca-se sob vácuo elevado para proporcionar Fármaco 10 possuindo um grupo amino desprotegido.
Assim, os métodos acima são úteis para a preparação de Fármacos que podem ser utilizados no presente invento.
Para preparar um Composto de Fármaco-Ligador do presente invento, faz-se reagir o Fármaco com um local reativo no Ligador. Em geral, o Ligador pode ter a estrutura:
quando estão presentes tanto uma unidade de Espaçador (-Y-) como uma Unidade de Extensor (-A-).
Em geral, um Ligador adequado tem uma unidade de Aminoácido ligada a uma Unidade de Extensor e a uma Unidade de Espaçador. 0 Local Reativo 1 está presente na extremidade do Espaçador e o Local Reativo 2 está presente na extremidade do Extensor.
Numa concretização do invento, o Local Reativo N.2 1 é reativo com um átomo de azoto do Fármaco, e o Local Reativo N.2 2 é reativo com um grupo sulfidrilo no Ligando. Os Locais Reativos 1 e 2 podem ser reativos com diferentes grupos funcionais.
Num aspeto do invento, o Local Reativo N.2 1 é
Noutro aspeto do invento, o Local Reativo N.2 1 é
onde R é -Br, -Cl, -O-Su ou -0-(4-nitrofenilo) .
Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 onde R é -Br ou -Cl podem ser preparados a partir de Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 fazendo reagir o grupo -C00H com PX3 ou PX5, onde X é -Br ou -Cl. Alternativamente, ligadores possuindo
' no Local Reativo N.2 1 podem ser preparados a partir de Ligadores possuindo
no Local
Reativo N.2 1 fazendo reagir o grupo -C00H com cloreto de tionilo. Para uma discussão geral da conversão de ácidos carboxilicos em halogenetos de acilo, ver March, Advanced Organic Chemistry - Reactions, Mechanisms and Structure, 4.â Ed., 1992, John Wiley and Sons, New York, págs. 437-438.
Noutro aspeto do invento, o Local Reativo N.2 1 é
Ainda noutro aspeto do invento, o Local Reativo N.2 1 é
onde R é -Cl, -O-CH(Cl)CCI3 ou -0-(4-nitrofenilo).
Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 podem ser preparados a partir de Ligadores possuindo
no Local
Reativo N. 2 1 fazendo reagir o grupo -OH com fosgénio ou trifosgénio para formar o cloroformato correspondente.
Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 onde R é -O-CH (Cl)CCI3 ou -0-(4-nitrofenilo) podem ser preparados a partir de Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 fazendo reagir o grupo -0C(0)Cl com HO-CH (Cl)CCI3 ou HO-(4-nitrofenilo), respetivamente. Para uma discussão sobre esta química, ver March, Advanced Organic Chemistry - Reactions, Mechanisms and Structure, 4·“ Ed., 1992, John Wiley and Sons, New York, pág. 392.
Num aspeto adicional do invento, o Local Reativo N.2 1 é
onde X é -F, -Cl, -Br, -I, ou um grupo rejeitável tal como -0-mesilo, -0-tosilo ou -0-triflato.
Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 onde X é -0-mesilo, -0-tosilo e 0-triflato podem ser preparados a partir de Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 fazendo reagir o grupo -OH com vários reagentes, incluindo HC1, SOCI2, PCls, PC13 e POCI3 (onde X é Cl) ; HBr, PBr3, PBr5 e S0Br2 (onde X é Br) ; Hl (onde X é I); e CH3CH2NSF3 (DAST) , SF4, SeF4 e fluoreto de p-toluenossulfonilo (onde X é F). Para uma discussão geral sobre a conversão de álcoois em halogenetos de alquilo, ver March, Advanced Organic Chemistry - Reactions, Mechanisms and Structure, 4·“ Ed., 1992, John Wiley and Sons, New York, págs. 431-433.
Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 onde X é -O-mesilo, -O-tosilo e -O-triflato, podem ser preparados a partir de Ligadores possuindo
no Local Reativo N.2 1 fazendo reagir o grupo -OH com vários reagentes de adição de mesilo, tosilo e triflato, respetivamente. Estes reagentes e métodos para a sua utilização serão bem conhecidos de um técnico competente na especialidade da síntese orgânica. Para uma discussão geral de mesilo, tosilo e triflatos como grupos rejeitáveis, ver March, Advanced Organic Chemistry Reactions, Mechanisms and Structure, 4·“ Ed., 1992, John Wiley and Sons, New York, págs. 353-354.
Numa concretização, quando está presente uma unidade de Espaçador (-Y-), o Local Reativo N.2 1 é
onde R é -Cl, -O-CH (Cl)CCI3 ou -0-(4-nitrofenilo) e X é -F, -Cl, -Br, -I, ou um grupo rejeitável tal como -O-mesilo, -O-tosilo ou -O-triflato.
Noutro aspeto do invento, o Local Reativo N.2 1 é
Ainda noutro aspeto do invento, o Local Reativo N.2 1 é um carbonato de p-nitrofenilo possuindo a fórmula
Num aspeto do invento, o Local Reativo N.2 2 é um grupo aceitador de tiol que é um grupo maleimida possuindo a fórmula
Ligadores úteis podem ser obtidos através de fontes comerciais, tais como Molecular Biosciences Inc. (Boulder, CO), ou sintetizados de acordo com procedimentos descritos na Patente dos E.U.A. N.2 6214345 de Firestone et al. , que se resumem nos Esquemas 8-10 seguintes.
Esquema 8
onde X é -CH2- ou -CH2OCH2-; e n é um inteiro que ou varia de 0-10 quando X é -CH2- ; ou de 1-10 quando X é -CH2OCH2-. O método que se mostra no Esquema 9 combina maleimida com um glicol sob condições de Mitsunobu para preparar um Extensor de polietilenoglicol-maleimida (ver, por exemplo, Walker, M.A. J. Org. Chem. 1995, 60, 5352-5), seguindo-se instalação de um grupo de Local Reativo de p-nitrofenil-carbonato.
Esquema 9
onde E é -CH2- ou -CH2OCH2-; e é um inteiro que varia de 0-8;
Alternativamente, extensores de PEG-maleimida e PEG-haloacetamida podem ser preparados como descrito por Frisch, et al., Bioconjugate Chem. 1996, 7, 180-186. O Esquema 10 ilustra uma síntese geral de uma unidade de Ligador ilustrativa contendo um grupo de Extensor maleimida e opcionalmente um Espaçador autodestrutivo de p-aminobenziléter.
Esquema 10
onde Q é -Ci-Cs alquilo, -O- (Ci-Cs alquilo), -halogéneo, -nitro ou -ciano; m é um inteiro que varia de 0-4; e n é um inteiro que varia de 0-10.
Extensores úteis podem ser incorporados num Ligador utilizando os intermediários disponíveis comercialmente na Molecular Biosciences (Boulder, CO) descritos abaixo por utilização de técnicas conhecidas de síntese orgânica.
Extensores de fórmula (Ilia) podem ser introduzidos num Ligador fazendo reagir os intermediários seguintes com o terminal N de uma unidade de Aminoácido como ilustrado nos Esquemas 11 e 12:
onde n é um inteiro que varia de 1-10 e T é -H ou -SCbNa;
onde n é um inteiro que varia de 0-3;
Unidades de Extensor de fórmula (Illb) podem ser introduzidas num Ligador fazendo reagir os intermediários seguintes com o terminal N de uma unidade de Aminoácido:
onde X é -Br ou -I; e
Unidades de Extensor de fórmula (IV) podem ser introduzidas num Ligador fazendo reagir os intermediários seguintes com o terminal N de uma unidade de Aminoácido:
Unidades de Extensor de fórmula (Va) podem ser introduzidas num Ligador fazendo reagir os intermediários seguintes com o terminal N de uma unidade de Aminoácido:
Outros Extensores úteis no invento podem ser sintetizados de acordo com procedimentos conhecidos. Extensores de amino-oxi da fórmula a seguir apresentada podem ser preparados por tratamento de halogenetos de alquilo com N-Boc-hidroxilamina de acordo com procedimentos descritos em Jones, D.S. et ai., Tetrahedron Letters, 2000, 41(10), 1531-1533; e Gilon, C. et al., Tetrahedron, 1967, 23(11), 4441-4447.
onde -R17- é selecionado entre -Ci-Cio alquileno-, -C3-C8 carbociclil-, -O-(Ci-Csalquil)-, -arileno-, -C1-C10 alquileno-arileno-, -arileno-Ci-Cio alquileno-, -C1-C10 alquileno- (C3-C8 carbociclil)-, - (C3-C8 carbociclil) -C1-C10 alquileno-, -C3-C8 heterociclil-, -C1-C10 alquileno-(C3-C8 heterociclil)-, - (C3-C8 heterociclil)-C1-C10 alquileno-, - (CH2CH2O) r~, - (CH2CH2O) r-CH2-; e r é um inteiro que varia de 1-10;
Extensores de isotiocianato da fórmula a seguir apresentada podem ser preparados a partir de cloretos de ácido isotiocianatocarboxílico como descrito em Angew. Chem., 1975, 87(14), 517.
onde -R17- é como aqui descrito. O Esquema 11 mostra um método para a obtenção de um Ligador de dipéptido val-cit possuindo um Extensor de maleimida e opcionalmente um Espaçador autodestrutivo de p-aminobenzilo.
Esquema 11
onde Q é -Ci-Cs alquilo, -0-(Ci-Cs alquilo), -halogéneo, -nitro ou -ciano; e m é um inteiro que varia de 0-4. 0 Esquema 12 ilustra a síntese de uma unidade de Ligador de dipéptido phe-lys(Mtr) possuindo uma Unidade de Extensor maleimida e uma unidade de Espaçador autodestrutivo p-aminobenzilo. 0 material de partida 23 (lys(Mtr)) está disponível comercialmente (Bachem, Torrance, CA) ou pode ser preparado de acordo com Dubowchik, et al. Tetrahedrom Letters 1997, 3_8, 5257-60.
Esquema 12
onde Q é -Ci-Cs alquilo, -0- (Ci-Cs alquilo), -haloqéneo, -nitro ou -ciano; e m é um inteiro que varia de 0-4.
Como se mostra no Esquema 13, pode-se fazer reagir um Ligador com um grupo amino de um Fármaco 10 para formar um Composto de Fármaco-Ligador que contém um grupo amida ou carbamato, ligando a unidade de Fármaco à unidade de Ligador. Quando o Local Reativo N.2 1 é um grupo ácido carboxílico, como no Ligador 29, a reação de acoplamento pode ser realizada utilizando HATU ou PyBrop e uma base de amina apropriada, resultando num Composto de Fármaco-Ligador 30, contendo uma ligação amida entre a unidade de Fármaco e a unidade de Ligador. Quando o Local Reativo N.2 1 é um carbonato, como no Ligador 31, o Ligador pode ser acoplado ao Fármaco utilizando HOBt numa mistura de DMF/piridina para proporcionar um Composto de Fármaco-Ligador 32, contendo uma ligação carbamato entre a unidade de Fármaco e a unidade de Ligador.
Quando o Local Reativo N.2 1 é um grupo hidroxilo, tal como no Ligador 33, o Ligador pode ser acoplado com um grupo fenol de um Fármaco utilizando química de Mitsunobu para proporcionar um Composto de Fármaco-Ligador 34 possuindo uma ligação éter entre a unidade de Fármaco e a unidade de Ligador.
Alternativamente, quando o Local Reativo N.2 1 é um bom grupo rejeitável, tal como no Ligador 70, o Ligador pode ser acoplado com um grupo hidroxilo ou um grupo amina de um Fármaco através de um processo de substituição nucleófila para proporcionar um Composto de Fármaco-Ligador possuindo uma ligação éter (34) ou uma ligação amina (71) entre a unidade de Fármaco e a unidade de Ligador. Métodos ilustrativos úteis para ligar um Fármaco a um Ligando para formar um Composto de Fármaco-Ligador são ilustrados no Esquema 13 e são delineados nos Procedimentos Gerais G-J.
Esquema 13
Procedimento Geral G: Formação de amida utilizando HATU.
Diluem-se um Fármaco 10 (1,0 eq.) e um Ligador de N protegido contendo um Local Reativo de ácido carboxílico (1,0 eq.) com um solvente orgânico adequado, tal como diclorometano, e trata-se a solução resultante com HATU (1,5 eq.) e uma base orgânica, preferivelmente piridina (1,5 eq.). Deixa-se a mistura reaccional agitar sob uma atmosfera inerte, preferivelmente árgon, durante 6 h, período durante o qual a mistura reaccional é monitorizada utilizando HPLC. Concentra-se a mistura reaccional e purifica-se o resíduo resultante utilizando HPLC para proporcionar a amida 30.
Procedimento Geral H: Formação de carbamato utilizando HOBt. Dilui-se uma mistura de um Ligador 31 possuindo um Local Reativo de carbonato de p-nitrofenilo (1,1 eq.) e Fármaco 10 (1,0 eq.) com um solvente orgânico aprótico, tal como DMF, para proporcionar uma solução com uma concentração de 50-100 mM, e trata-se a solução resultante com HOBt (2,0 eq.) e coloca-se sob uma atmosfera inerte, preferivelmente árgon. Deixa-se a mistura reaccional agitar durante 15 min, e depois adiciona-se uma base orgânica, tal como piridina (1/4 v/v), e monitoriza-se o progresso da reação utilizando HPLC. O Ligador é tipicamente consumido em 16 h. Concentra-se depois a mistura reaccional in vacuo e purifica-se o resíduo resultante utilizando, por exemplo, HPLC para proporcionar o carbamato 32.
Procedimento Geral I: Formação de éter utilizando química de Mitsunobu. Dilui-se um Fármaco de fórmula geral 10, que contém um grupo hidroxilo livre, com THF para preparar uma solução 1,0 Me a esta solução adiciona-se um Ligador (1,0 eq) contendo um grupo hidroxi no Local Reativo N.2l (33), seguido de trifenilfosfina (1,5 eq.). Coloca-se a mistura reaccional sob uma atmosfera de árgon e arrefece-se até 0°C. Adiciona-se depois DEAD (1,5 eq.) gota a gota através de seringa e deixa-se a mistura reaccional agitar à temperatura ambiente enquanto se monitoriza utilizando HPLC. A reação está tipicamente completa em 0,5-12 h, dependendo dos substratos. Dilui-se a mistura reaccional com água (em volume igual ao do THF) e extrai-se a mistura reaccional para EtOAc. Lava-se a fase de EtOAc sequencialmente com água e salmoura, depois seca-se sobre MgSCb e concentra-se. Purifica-se o resíduo resultante através de cromatografia de coluna "flash" utilizando u eluente adequado para proporcionar o éter 34.
Procedimento Geral J: Formação de éter/amina através de substituição nucleófila. Dilui-se um Fármaco de fórmula geral 10, que contém um grupo hidroxilo livre ou um grupo amina livre, com um solvente aprótico polar, tal como THF, DMF ou DMSO, para preparar uma solução 1,0 M e a esta solução adiciona-se uma base não nucleófila (cerca de 1,5 eq.) , tal como piridina, di-isopropiletilamina ou trietilamina. Deixa-se a mistura reaccional a agitar durante cerca de 1 hora, e à solução resultante adiciona-se uma solução aproximadamente 1,0 M de Ligador 70 num solvente aprótico polar, tal como THF, DMF ou DMSO. Agita-se a mistura reaccional resultante sob uma atmosfera inerte enquanto é monitorizada utilizando TLC ou HPLC. A reação está tipicamente completa em 0,5-12 h, dependendo dos substratos. Dilui-se a mistura reaccional com água (em volume igual ao volume da mistura reaccional) e extrai-se para EtOAc. Lava-se a fase de EtOAc sequencialmente com água, HC1 1 N, água, e salmoura, depois seca-se sobre MgS04 e concentra-se. Purifica-se o resíduo resultante através de cromatografia de coluna "flash" utilizando um eluente adequado para proporcionar um éter de fórmula 34 ou uma amina de fórmula 71, dependendo de se o fármaco 10 continha um grupo hidroxilo livre ou um grupo amina livre.
Um método alternativo para preparar Compostos de Fármaco-Ligador do invento é delineado no Esquema 14. Utilizando o método do Esquema 14, o Fármaco é ligado a uma unidade parcial de Ligador (19a, por exemplo), que não possui uma Unidade de Extensor ligada. Isto proporciona o intermediário 35, que tem uma unidade de Aminoácido possuindo um terminal N protegido com Fmoc. Remove-se então o grupo Fmoc e liga-se depois o intermediário de amina resultante 36 a uma Unidade de Extensor através de uma reação de acoplamento catalisada utilizando PyBrop ou DEPC. No Esquema 14 ilustra-se a construção de Compostos de Fármaco-Ligador contendo quer um Extensor de bromoacetamida 39 quer um Extensor de PEG-maleimida 38.
Esquema 14
onde Q é -Ci-Cs alquilo, -0- (Ci-Cs alquilo), -halogéneo, -nitro ou -ciano; e m é um inteiro que varia de 0-4.
No Esquema 15 mostra-se uma metodologia útil para a preparação de uma unidade de Ligador contendo um espaçador ramificado.
Esquema 15
0 Esquema 15 ilustra a síntese de um ligador de dipéptido val-cit possuindo uma Unidade de Extensor maleimida e uma unidade bis(4-hidroximetil)estireno (BHMS). A síntese do intermediário de BHMS (75) foi melhorada a partir de procedimentos anteriores da literatura (ver Publicação Internacional N.2 WO 9813059 a Firestone et al. , e Crozet, M.P.; Archaimbault, G.; Vanelle, P.; Nouguier, R. Tetrahedron Lett. 1985, 26, 5133-5134) e utiliza como materiais de partida (4-nitrobenzil)fosfonato de dietilo (72) disponível comercialmente e 2,2-dimetil-1,3-dioxan-5-ona (73) disponível comercialmente. Os Ligadores 77 e 79 podem ser preparados a partir do intermediário 75 utilizando a metodologia descrita no Esquema 11. 0 Esquema 16 ilustra a metodologia útil para a preparação de conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando do invento possuindo cerca de 2 a cerca de 4 fármacos por anticorpo.
Esquema 16
Procedimento Geral K: Preparação de Conjugados possuindo cerca de 2 a cerca de 4 fármacos por anticorpo.
Redução Parcial do Anticorpo
Em geral, para preparar conjugados possuindo 2 fármacos por anticorpo, o anticorpo relevante é reduzido utilizando um agente de redução tal como ditiotreitol (DTT) ou tricarboniletilfosfina (TCEP) (cerca de 1,8 equivalentes) em PBS com DTPA 1 mM, ajustado a pH 8 com borato 50 mM. Incuba-se a solução a 37°C durante 1 hora, purifica-se utilizando uma coluna de dessalinização G25 de 50 ml equilibrada em PBS/DTPA 1 mM a 4°C. A concentração de tiol pode ser determinada de acordo com o Procedimento Geral M, a concentração de proteína pode ser determinada dividindo o valor de A280 pelo coeficiente de extinção de 1,58 (mg/ml) , e a proporção de tiol para anticorpo pode ser determinada de acordo com o Procedimento Geral N.
Conjugados possuindo 4 fármacos por anticorpo podem ser preparados utilizando a mesma metodologia, utilizando cerca de 4,2 equivalentes de um agente de redução adequado para reduzir parcialmente o anticorpo.
Conjugação de Fármaco-Ligador a Anticorpo Parcialmente Reduzido
As amostras de anticorpo parcialmente reduzido podem ser conjugadas com um composto de Fármaco-Ligador correspondente utilizando cerca de 2,4 e cerca de 4,6 equivalentes molares de composto de Fármaco-Ligador por anticorpo para preparar os conjugados de 2 e 4 fármacos por anticorpo, respetivamente. As misturas reaccionais de conjugação são incubadas em gelo durante 1 hora, extinguem-se com um excesso de cerca de 20 vezes de cisteina para fármaco, e purificam-se por eluição sobre uma coluna de dessalinização G25 a cerca de 4°C. Os conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando resultantes são concentrados até cerca de 3 mg/ml, esterilizados por filtração, divididos em alíquotas e armazenados congelados. O Esquema 17 ilustra a construção de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando por reação do grupo sulfidrilo de um Ligando com um grupo aceitador de tiol no grupo de Ligador de um Composto de Fármaco-Ligador.
Esquema 17
Métodos ilustrativos para ligação de um anticorpo de Ligando a um Composto de Fármaco-Ligador são delineados a seguir nos Procedimentos Gerais L-R.
Procedimento Geral L: Ligação de um Ligando de Anticorpo a um Composto de Fármaco-Ligador. Todos os passos de reação são realizados tipicamente a 4°C. Quando o Ligando é um anticorpo monoclonal possuindo uma ou mais ligações dissulfureto, soluções do anticorpo monoclonal (5-20 mg/mL) em solução salina tamponada com fosfato, pH 7,2, são reduzidas com ditiotreitol (10 mM final) a 37°C durante 30 minutos (ver Procedimento Geral M) e a separação de agentes de peso molecular baixo é conseguida por cromatografia de exclusão de tamanhos em colunas Sephadex G25 em PBS contendo ácido dietilenotriaminapenta-acético 1 mM. O teor em sulfidrilo no Ligando pode ser determinado utilizando 5,5'-ditiobis(ácido 2-nitrobenzóico) (DTNB) como descrito no Procedimento Geral M (ver Riddles, P. W., Blakeley, R. L., e Zemer, B. (1979) Anal. Biochem. 94, 75-81) . A uma solução em PBS do Ligando reduzido de acordo com o Procedimento Geral L, adiciona-se um Composto de Fármaco-Ligador em MeCN tal que a solução é 20% de MeCN/PBS (vol/vol). A quantidade de Composto de Fármaco-Ligador é aproximadamente 10% mais do que o número total de grupos sulfidrilo num Ligando. Após 60 min a 4°C, adiciona-se cisteina (excesso de 20 vezes em relação à concentração do Composto de Fármaco-Ligador), concentra-se a solução por ultrafiltração, e removem-se por filtração em gel quaisquer agentes de peso molecular baixo. O número de Compostos de Fármaco-Ligador por anticorpo é determinado por espectroscopia de uv/vis utilizando fórmulas derivadas a partir dos coeficientes de extinção relativos dos Ligandos e Compostos de Fármaco-Ligador como descrito no Procedimento Geral O. A quantidade de Composto de Fármaco-Ligador extinto é depois determinada como descrito no Procedimento Geral P utilizando HPLC de fase reversa. O estado de agregação dos Anticorpos de Ligando dos Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando pode ser determinado HPLC de exclusão de tamanhos como descrito no Procedimento Geral R. Os Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando podem ser utilizados sem qualquer purificação adicional.
Procedimento Geral M: Redução das ligações dissulfureto intercadeia de um anticorpo. A uma solução de 2 4 mg de um anticorpo (2,4 mL de uma solução 10 mg/mL) num tampão adequado adicionam-se 300 pL de tampão de borato (borato de sódio 500 mM/cloreto de sódio 500 mM, pH 8,0) seguindo-se 300 pL de ditiotreitol (DTT, solução de 100 mM em H2O) . Agita-se a mistura reaccional utilizando um equipamento de vórtice e incuba-se a 37°C durante 30 min. Equilibram-se três colunas PD10 com PBS contendo DTPA 1 mM (em PBS) e elui-se o anticorpo reduzido através das três colunas PD10 e recolhe-se em 4,2 mL de solução PBS/DTPA (1,4 mL por coluna). O anticorpo reduzido é depois armazenado em gelo. O número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo são determinados de acordo com o Procedimento Geral N.
Procedimento Geral N: Determinação do número de tióis por
Ligando.
Uma amostra de referência de um Ligando ou uma amostra de um anticorpo reduzido de acordo com o Procedimento Geral L é diluída a cerca de 1:40 (p/p) em PBS, e mede-se a absorvância uv da solução a 280 nm utilizando métodos padrão de espectroscopia uv. Preferivelmente, a proporção de Ligando:PBS na solução é tal gue a absorvância uv varia de cerca de 0,13 - 0,2 AU (unidades de absorvância).
Uma amostra de teste de um Ligando ou uma amostra de teste de um anticorpo reduzido de acordo com o Procedimento Geral L é diluída a cerca de 1:20 com uma solução de PBS contendo cerca de 15 pL de solução de reserva de DTNB/mL de PBS. Prepara-se depois uma amostra de branco contendo DTNB na mesma concentração gue a solução de teste (i.e., 15 pL de reserva de DTNB/mL de PBS) . O espectrofotómetro é acertado no valor de referência de zero nm com a amostra de branco, e depois mede-se a absorvância da amostra de teste a 412 nm.
Determina-se depois a concentração molar do anticorpo utilizando a fórmula: [Ligando] = (OD280/2,24e5) χ fator de diluição.
Determina-se depois a concentração molar de tiol utilizando a fórmula: [ — SH] = (OD412/I, 415e4) x fator de diluição.
Calcula-se depois a relação [SH]/[Ligando]. Um Ligando de anticorpo monoclonal reduzido pode ter de 1 a cerca de 20 grupos sulfidrilo, mas tipicamente tem entre cerca de 6 e cerca de 9 grupos sulfidrilo. Numa concretização preferida, a relação [SH]/[Ligando] é de cerca de 7 a cerca de 9. É entendido gue a relação [SH]/[Ligando] é o número médio de unidades -Aa-Ww-Yy-D por unidade de Ligando.
Procedimento Geral O: Determinação do número de moléculas de Fármaco por Anticorpo num Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo. A proporção de Fármaco:Anticorpo para um Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo é determinada por medição do número de tióis reduzíveis por ditiotreitol (DTT) que restam após conjugação, utilizando o método seguinte: Trata-se uma amostra de 200 mL de um conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo com DTT (solução 100 mM em água) para ajustar a concentração a 10 mM em DTT. Incuba-se a solução resultante a 37°C durante 30 min, e depois elui-se através de uma coluna PD10 utilizando PBS/DTPA como o eluente. Mede-se depois a OD280 do conjugado reduzido e mede-se a concentração molar de acordo com o Procedimento Geral Q. A molar concentração de tiol é determinada utilizando DTNB como descrito no Procedimento Geral M. Calcula-se depois a proporção da concentração de tiol para concentração de anticorpo e a proporção de Fármaco:Ligando é a diferença entre a proporção de Tiol:Anticorpo (determinada utilizando o Procedimento Geral N) e a proporção de Fármaco:Anticorpo conforme determinada no parágrafo anterior.
Procedimento Geral P: Determinação da quantidade de composto de Fármaco-Ligador extinto num Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo. Este ensaio proporciona uma determinação quantitativa do Fármaco-Ligador no conjugado de Fármaco-Ligador-Ant icorpo que não está ligado covalentemente ao Anticorpo. Assumindo que todos os grupos maleimida de Fármaco-Ligador na mistura reaccional foram extintos com cisteína, o fármaco não ligado é o aduto extinto com cisteína do Composto de Fármaco-Ligador, i.e. Fármaco-Ligador-Cys. O Conjugado proteico de Fármaco-Ligador-Anticorpo é desnaturado, precipitado e isolado por centrifugação sob condições nas quais o Fármaco-Ligador-Cys é solúvel. O Fármaco-Ligador-Cys não ligado é detetado quantitativamente por HPLC, e o cromatograma resultante é comparado com uma curva de calibração para determinar a concentração de Fármaco-Ligador-Cys não ligado na amostra. Esta concentração é dividida pela concentração total de Fármaco no conjugado conforme determinada utilizando o Procedimento Geral O e o Procedimento Geral Q.
Especificamente, preparam-se 100 mL de uma "solução de trabalho" de aduto Fármaco-Ligador-Cys 100 μΜ por adição de 1 pL de cisteína 100 mM em PBS/DTPA e de um volume apropriado de solução de reserva de um composto de Fármaco-Ligador a 98 pL de 50% de metanol/PBS. O "volume apropriado" em litros é calculado utilizando a fórmula: V = le-8/[Fármaco-Ligador]. São depois rotulados seis tubos como se segue: "0", "0,5", "1", "2", "3" e "5", e colocam-se as quantidades apropriadas de solução de trabalho em cada tubo e diluem-se com 50% de metanol/PBS para dar um volume total de 100 mL em cada tubo. Os rótulos indicam a concentração μΜ dos padrões.
Recolhem-se uma solução de 50 pL de um Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo e uma solução de 50 pL da mistura reaccional extinta ("qrm") com cisteina em tubos de ensaio separados e dilui-se cada uma com 50 pL de metanol que tinha sido arrefecido até -20°C. Arrefecem-se depois as amostras a -20°C durante 10 min.
Centrifugam-se depois as amostras a 13000 rpm numa centrifugadora de bancada durante 10 min. Transferem-se os sobrenadantes para frascos de HPLC, e analisam-se separadamente alíquotas de 90 pL de cada amostra utilizando HPLC (coluna C12 RP (Phenomenex); monitoriza-se ao máximo de absorvância do Composto de Fármaco-Ligador utilizando um caudal de 1,0 mL/min; o eluente utilizado é um gradiente linear de MeCN variando de 10 a 90% em fosfato de amónio 5 mM aquoso, pH 7,4, durante 10 min; depois MeCN a 90% durante 5 min.; e depois retorno às condições iniciais). O aduto de Fármaco-Ligador-Cys é eluido tipicamente entre cerca de 7 e cerca de 10 minutos.
Prepara-se depois uma curva de calibração representando graficamente a área de pico dos padrões em função da sua concentração (em pM). Realiza-se uma análise de regressão linear para determinar a equação e o coeficiente de correlação da curva de calibração. Os valores de R2 são tipicamente >0,99. A partir da equação de regressão determina-se a concentração do aduto de Fármaco-Ligador-Cys na amostra de HPLC e no conjugado, utilizando as fórmulas: [Fármaco-Ligador-Cys] (hplc spi) = (Área de pico-ordenada na origem)/declive; [Fármaco-Ligador-Cys] (conjugado) = 2x [Fármaco-Ligador-Cys] (hplc sPd A percentagem de aduto Fármaco-Ligador-Cys presente pode ser determinada utilizando a fórmula: % de Fármaco-Ligador-Cys = 100x[Fármaco-Ligador-Cys] (conjugado) /[fármaco] onde [fármaco] = [Conjugado] χ fármaco/Ab, [Conjugado] é determinada utilizando o ensaio de concentração de conjugado, e a proporção de Fármaco:Anticorpo é determinada utilizando o ensaio da proporção de Fármaco:Anticorpo.
Procedimento Geral Q: Determinação da concentração de
Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo para ligadores de fármaco com absorvância uv minima a 280 nm. A concentração de conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo pode ser determinada do mesmo modo que para a concentração do anticorpo de origem, por medição da absorvância a 280 nm de uma diluição apropriada, utilizando a fórmula seguinte: [Conjugado](mg/mL) = (OD28oxfactor de diluição/1,4)x0,9
Determinação da concentração de Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo para ligadores de fármaco com absorvância uv substancial a 280 nm (e.g. Compostos 68 e 69). Porque as absorvâncias dos Compostos 68 e 69 se sobrepõem com as absorvâncias de um anticorpo, a determinação espectrofotométrica da concentração de conjugado é muito útil quando a medição é realizada utilizando ambas as absorvâncias a 270 nm e 280 nm. Utilizando estes dados, a concentração molar de conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando é dada pela fórmula seguinte: [Conjugado] = (OD28oxl, 23e_5-OD27ox9,35e-6) x fator de diluição onde os valores l,23e~5 e 9,35e~6 são calculados a partir dos coeficientes de extinção molar do fármaco e do anticorpo, que são estimados como: e27o Fármaco = 2,06e4 e27o Anticorpo = l,87e5 e28o Fármaco = l,57e4 e28o Anticorpo = 2,24e5
Procedimento Geral R: Determinação do estado de agregação do Anticorpo num Conjugado de Fármaco-Ligador-Anticorpo. Uma quantidade adequada ( 10 pg) de um Conjugado de Fármaco-
Ligador-Anticorpo é eluída através de uma coluna de cromatografia de exclusão de tamanhos (SEC) (Tosoh Biosep SW3000 4,6 mm χ 30 cm eluída a 0,35 mL/min com PBS) sob condições padrão. Os cromatogramas são obtidos para 220 nm e 280 nm e calcula-se a relação OD280/OD220. Tipicamente, o agregado correspondente tem um tempo de retenção entre cerca de 5,5 e cerca de 7 min, e tem aproximadamente a mesma relação OD280/OD220 que o Conjugado de Fármaco-Ligador-Ant icorpo monomérico.
5.8 COMPOSIÇÕES
Noutros aspetos, o presente invento proporciona uma composição farmacêutica adaptada para administração intravenosa preferivelmente compreendendo uma quantidade eficaz de um Composto de Fórmula Ia e um transportador ou veículo farmaceuticamente aceitáveis. Para conveniência, os compostos de Fórmula Ia úteis no invento podem simplesmente ser referidos como compostos do invento. As composições são adequadas para administração humana.
As composições do presente invento podem estar em qualquer forma que permita que a composição seja administrada intravenosamente a seres humanos. Por exemplo, a composição pode estar na forma de um sólido ou um líquido. Outras vias de administração aqui divulgadas incluem, oral, tópica, parentérica, sublingual, retal, vaginal, ocular e intranasal. A administração parentérica inclui injeções subcutâneas, intramusculares, injeção intraesternal ou técnicas de infusão. As composições farmacêuticas do invento podem ser formuladas de modo a permitir que um Composto do Invento fique biodisponível após administração da composição a um animal. As composições podem tomar a forma de uma ou mais unidades de dosagem.
Materiais utilizados na preparação das composições farmacêuticas podem ser não tóxicos nas quantidades utilizadas. Será evidente para os técnicos competentes na especialidade que a dosagem ótima do(s) ingrediente(s) ativo(s) na composição farmacêutica dependerá de uma variedade de fatores. Fatores relevantes incluem, sem limitação, o tipo de animal (e.g., humano), a forma particular do Composto do
Invento, o modo de administração, e a composição utilizada. 0 transportador ou veiculo farmaceuticamente aceitáveis podem ser part iculados, tal que as composições estão, por exemplo, em forma de pó. 0(s) transportador (es) pode(m) ser liquido(s), sendo as composições, por exemplo, um liquido injetável. A composição pode estar na forma de um liquido, e.g., uma solução, emulsão ou suspensão. 0 liquido pode ser útil para entrega por injeção. Numa composição para administração por injeção, podem também ser incluídos um ou mais de um tensioativo, conservante, agente molhante, agente dispersante, agente de suspensão, tampão, estabilizador e agente isotónico.
As composições líquidas do invento, sejam estas soluções, suspensões ou outra forma similar, podem também incluir um ou mais dos seguintes: diluentes estéreis tais como água para injeção, solução salina, preferivelmente solução salina fisiológica, solução de Ringer, cloreto de sódio isotónico, óleos fixos tais como mono- ou diglicéridos sintéticos que podem servir como o solvente ou meio de suspensão, polietilenoglicóis, glicerina, ciclodextrina, propilenoglicol ou outros solventes; agentes antibacterianos tais como álcool benzílico ou metilparabeno; antioxidantes tais como ácido ascórbico ou bissulfito de sódio; agentes quelantes tais como ácido etilenodiaminatetra-acético; tampões tais como acetatos, citratos ou fosfatos e agentes para o ajustamento da tonicidade tais como cloreto de sódio ou dextrose. Uma composição parentérica pode ser incluída numa ampola, uma seringa descartável ou um frasco para múltiplas doses de vidro, plástico ou outro material. A solução salina fisiológica é um adjuvante preferido. Uma composição injetável é preferivelmente estéril. A quantidade do Composto do Invento que é eficaz no tratamento de uma perturbação ou condição particular dependerá da natureza da perturbação ou condição, e pode ser determinada por técnicas clínicas padrão. Adicionalmente, podem-se utilizar opcionalmente ensaios in vitro ou in vivo para auxiliar a identificar os intervalos de dosagem ótimos. A dose exata a utilizar nas composições dependerá também da via de administração, e da gravidade da doença ou perturbação, e deverá ser decidida de acordo com o julgamento do médico assistente e as circunstâncias de cada paciente.
As composições compreendem uma quantidade eficaz de um Composto do Invento de modo a obter uma dosagem adequada. Tipicamente, esta quantidade é pelo menos cerca de 0,01% de um Composto do Invento em peso da composição. Composições preferidas do presente invento são preparadas tal que uma unidade de dosagem parentérica contém de cerca de 0,01% a cerca de 2% em peso do Composto do Invento.
Para administração intravenosa, a composição pode compreendes de cerca de 1 a cerca de 250 mg de um Composto do Invento por kg de peso corporal do animal. Preferivelmente, a quantidade administrada estará no intervalo de cerca de 4 a cerca de 25 mg/kg de peso corporal do Composto do Invento.
Geralmente, a dosagem de Composto do Invento administrada a um animal é tipicamente cerca de 0,1 mg/kg a cerca de 250 mg/kg de peso corporal do animal. Preferivelmente, a dosagem administrada a um animal está entre cerca de 0,1 mg/kg e cerca de 20 mg/kg de peso corporal do animal, mais preferivelmente cerca de 1 mg/kg a cerca de 10 mg/kg de peso corporal do animal.
Os Compostos do Invento ou composições podem ser administrados intravenosamente por qualquer via conveniente, por exemplo por infusão ou injeção São conhecidos vários sistemas de entrega, e.g., encapsulação em lipossomas, microparticulas, microcápsulas, cápsulas, etc., e podem ser utilizados para administrar um Composto do Invento ou composição. Em certas concretizações, é administrado mais do que um Composto do invento ou composição a um animal. O modo de administração preferido é deixado à discrição do médico assistente, e dependerá em parte do local da condição médica (tal como o local do cancro ou doença autoimune). O termo "transportador" refere-se a um diluente, adjuvante ou excipiente, com o qual um Composto do Invento é administrado. Estes transportadores farmacêuticos podem ser líquidos, tais como água e óleos, incluindo aquelas com origem no petróleo, animal, vegetal ou sintética, tais como óleo de amendoim, óleo de soja, óleo mineral, óleo de sésamo e outros, os transportadores podem ser solução salina saline, goma-arábica, gelatina, pasta de amido, talco, queratina, sílica coloidal, ureia, e outros. Adicionalmente, podem-se utilizar agentes auxiliares, estabilizantes, espessantes, lubrificantes e corantes. Numa concretização, quando administrados a um animal, os Compostos do invento ou composições e transportadores farmaceuticamente aceitáveis são estéreis. A água é um transportador preferido quando os Compostos do Invento são administrados intravenosamente. Soluções salinas e soluções aquosas de dextrose e glicerol podem também ser utilizadas como transportadores líquidos para soluções injetáveis. As presentes composições, se desejado, podem também conter quantidades menores de agentes molhantes ou emulsionantes, ou agentes de tamponamento do pH.
As presentes composições podem tomar a forma de soluções, suspensões, emulsão, comprimidos, cápsulas, cápsulas contendo líquidos, pós, ou qualquer outra forma adaptada para utilização intravenosa. Transportadores farmacêuticos adequados são descritos em "Remington's Pharmaceutical Sciences" por E.W. Martin.
Os Compostos do Invento são formulados de acordo com procedimentos de rotina como uma composição farmacêutica adaptada para administração intravenosa a seres humanos. Tipicamente, os transportadores ou veículos para administração intravenosa são soluções tampão aquosas isotónicas estéreis. Quando necessário, as composições podem também incluir um agente de solubilização. Composições para administração intravenosa podem compreender opcionalmente um anestésico local tal como lignocaína para aliviar a dor no local da injeção. Geralmente, os ingredientes são fornecidos quer separadamente quer misturados em conjunto na forma de dosagem unitária, por exemplo, como um pó liofilizado seco ou concentrado isento de água num recipiente vedado hermeticamente tal como uma ampola ou saqueta indicando a quantidade de agente ativo. Quando se pretende administrar um Composto do Invento por perfusão, este pode ser dispensado, por exemplo, com um frasco de perfusão contendo água ou solução salina de grau farmacêutico estéril. Quando o Composto do invento é administrado por injeção, pode ser fornecida uma ampola de água estéril para injeção ou solução salina tal que os ingredientes podem ser misturados antes da administração.
As composições farmacêuticas podem ser preparadas utilizando metodologia bem conhecida na especialidade farmacêutica. Por exemplo, uma composição destinada a ser administrada por injeção pode ser preparada por combinação de um Composto do Invento com água de modo a formar uma solução. Pode-se adicionar um tensioativo para facilitar a formação de uma solução ou suspensão homogénea. Os tensioativos são compostos que interagem não covalentemente com um Composto do Invento de modo a facilitar a dissolução ou suspensão homogénea do composto ativo no sistema de entrega aquoso.
5.9 UTILIZAÇÕES TERAPÊUTICAS DOS COMPOSTOS DO INVENTO
Os Compostos do Invento são úteis para tratamento de cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa num animal.
5.10 TRATAMENTO DE CANCRO
Os Compostos do Invento são úteis para inibir a multiplicação de células de tumor ou células de cancro, ou para tratamento de cancro num animal. Os Compostos do Invento podem ser utilizados de modo adequado numa variedade de cenários para o tratamento de cancros em animais. Os Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando podem ser utilizados para entregar um Fármaco ou unidade de Fármaco a uma célula de tumor ou célula de cancro. Sem querer estar limitado pela teoria, numa concretização, a unidade de Ligando de um Composto do Invento liga-se ou associa-se a um antigénio associado a uma célula de cancro ou uma célula de tumor, e o Composto do Invento pode ser absorvido para o interior de uma célula de tumor ou célula de cancro através de endocitose mediada por recetor. 0 antigénio pode estar ligado a uma célula de tumor ou célula de cancro ou pode ser uma proteína de matriz extracelular associada à célula de tumor ou célula de cancro. Uma vez no interior da célula, uma ou mais sequências peptídicas específicas dentro da unidade de Ligador são clivadas hidroliticamente por uma ou mais proteases associadas à célula de tumor ou célula de cancro, resultando na libertação de um Fármaco ou de um de Composto de Fármaco-Ligador. 0 Fármaco ou o Composto de Fármaco-Ligador libertados estão depois livres para migrar no citosol e induzir atividades citotóxicas. Numa concretização alternativa, o Fármaco ou unidade de Fármaco é clivado do Composto do Invento fora da célula de tumor ou célula de cancro, e o Fármaco ou Composto de Fármaco-Ligador penetra subsequentemente na célula.
Numa concretização, a unidade de Ligando liga-se à célula de tumor ou célula de cancro.
Noutra concretização, a unidade de Ligando liga-se a um antigénio da célula de tumor ou célula de cancro que está sobre a superfície da célula de tumor ou célula de cancro.
Noutra concretização, a unidade de Ligando liga-se a um antigénio de célula de tumor ou célula de cancro que é uma proteína de matriz extracelular associada à célula de tumor ou célula de cancro.
Numa concretização, a célula de tumor ou célula de cancro é do tipo de tumor ou cancro de que o animal necessita de tratamento ou prevenção. A especificidade da unidade de Ligando por uma célula de tumor ou célula de cancro particular pode ser importante para determinar aqueles tumores ou cancros que são tratados muito eficazmente. Por exemplo, Compostos do Invento possuindo uma unidade de Ligando BR96 podem ser úteis para tratamento de carcinomas positivos em antigénio incluindo de pulmão, mama, cólon, ovários e pâncreas. Compostos do Invento possuindo uma unidade de Ligando anti-CD30 ou anti-CD40 podem ser úteis para tratamento de doenças malignas hematológicas.
Outros tipos particulares de cancros que podem ser tratados com Compostos do Invento incluem mas não estão limitados aos divulgados na Tabela 3. TABELA 3
Tumores sólidos, incluindo mas não limitados a: fibrossarcoma mixossarcoma lipossarcoma condrossarcoma sarcoma osteogénico cordoma angiossarcoma endoteliossarcoma linfangiossarcoma linfangioendoteliossarcoma sinovioma mesotelioma tumor de Ewing leiomiossarcoma rabdomiossarcoma cancro do cólon cancro coloretal cancro do rim cancro pancreático cancro ósseo cancro da mama cancro de ovário cancro da próstata cancro esofágico cancro do estômago cancro oral cancro nasal cancro da garganta carcinoma de células escamosas carcinoma de células basais adenocarcinoma carcinoma de glândulas sudoríparas carcinoma de glândulas sebáceas carcinoma papilar adenocarcinomas papilares cistoadenocarcinoma carcinoma medular carcinoma broncogénico carcinoma de células renais hepatoma carcinoma do dueto biliar coriocarcinoma seminoma carcinoma embrionário tumor de Wilms cancro cervical cancro uterino cancro testicular carcinoma do pulmão de células pequenas carcinoma da bexiga cancro do pulmão carcinoma epitelial glioma glioblastoma multiforme astrocitoma meduloblastorna craniofaringioma ependimoma pinealoma hemangioblastoma neuroma acústico oligodendroglioma meningioma cancro da pele melanoma neuroblastoma retinoblastoma cancros sanguíneos, incluindo mas não limitados a: leucemia linfoblástica aguda "ALL" leucemia linfoblástica aguda de células B leucemia linfoblástica aguda de células T leucemia mieloblástica aguda "AML" leucemia promielocítica aguda "APL" leucemia monoblástica aguda leucemia eritroleucémica aguda leucemia megacarioblástica aguda leucemia mielomonocitica aguda leucemia não linfocítica aguda leucemia indiferenciada aguda leucemia mielocítica crónica "CML" leucemia linfocítica crónica "CLL" leucemia de células pilosas mieloma múltiplo leucemias aguda e crónica: linfoblástica mielógena linfocíticas leucemias mielocíticas Linfornas: doença de Hodgkin linfoma não Hodgkin mieloma múltiplo macroglobulinemia de Waldenstrom doença de cadeia pesada policitemia vera
Os Compostos do Invento podem também ser utilizados como agentes quimioterapêuticos na forma não direcionada. Por exemplo, os próprios Fármacos, ou os Compostos de Fármaco-Ligador são úteis para tratamento de cancros ou tumores de ovário, SNC, renal, pulmão, cólon, melanoma ou hematológicos.
Os Compostos do Invento proporcionam direcionamento ao tumor ou cancro específico da Conjugação, reduzindo assim a toxicidade geral destes compostos. As unidades de Ligador estabilizam os Compostos do Invento no sangue, mas no entanto são cliváveis por proteases específicas de tumor no interior da célula, libertando um Fármaco.
5.10.1 TERAPIA MULTI—MODALIDALIDADE PARA O CANCRO 0 cancro, incluindo, mas não limitado a, um tumor, metástase ou qualquer doença ou perturbação caracterizada por crescimento celular descontrolado, pode ser tratado ou prevenido por administração de um Composto do Invento.
Noutras concretizações, o invento proporciona utilizações de compostos do invento para tratar ou prevenir o cancro, compreendendo administrar a um animal necessitado uma quantidade eficaz de um Composto do Invento e de um agente quimioterapêutico. Numa concretização o agente quimioterapêutico é aquele para o qual se constatou que o que o tratamento do cancro não é refratário. Noutra concretização, o agente quimioterapêutico é aquele para o qual se constatou que o que o tratamento do cancro é refratário. Os Compostos do Invento podem ser administrados a um animal que foi submetido a cirurgia como tratamento para o cancro.
Numa concretização, o método adicional de tratamento é terapia de radiação.
Numa concretização específica, o Composto do Invento é administrado concorrentemente com o agente quimioterapêutico ou com terapia de radiação. Noutra concretização específica, o agente quimioterapêutico ou terapia de radiação é administrado antes ou subsequentemente à administração de um Composto do Invento, preferivelmente pelo menos uma hora, cinco horas, 12 horas, um dia, uma semana, um mês, mais preferivelmente vários meses (e.g., até três meses), antes ou subsequentemente à administração de um Composto do Invento.
Um agente quimioterapêutico pode ser administrado durante uma série de sessões, e podem ser administrados qualquer um ou uma combinação dos agentes quimioterapêuticos listados na Tabela 4. No que se refere à radiação, pode-se utilizar qualquer protocolo de terapia de radiação dependendo do tipo de cancro a ser tratado. Por exemplo, mas não como limitação, pode-se administrar terapia de radiação de raios x; em particular, pode-se utilizar megavoltagem de alta energia (radiação de energia superior a 1 MeV) para tumores profundos, e pode-se utilizar feixe de eletrões e radiação de raios x de ortovoltagem para cancros de pele. Podem-se também administrar radioisótopos que emitem raios gama, tais como isótopos radioativos de rádio, cobalto e outros elementos.
Adicionalmente, o invento proporciona utilizações para tratamento de cancro com um Composto do Invento como uma alternativa a quimioterapia ou terapia de radiação onde quimioterapia ou terapia de radiação têm demonstrado ou podem vir a demonstrar ser demasiado tóxicas, e.g., resultam em efeitos secundários inaceitáveis ou insuportáveis, para o sujeito que está a ser tratado. Opcionalmente, o animal a ser tratado pode ser tratado com outro tratamento do cancro tal como cirurgia, terapia de radiação ou quimioterapia, dependendo de qual o tratamento que se constata ser aceitável ou suportável.
Os Compostos do Invento podem também ser utilizados de um modo in vitro ou ex vivo, tal como para o tratamento de certos, incluindo, mas não limitados a, leucemias e linfomas, um tal tratamento envolvendo transplantes de células estaminais autólogas. Isto pode envolver um processo em múltiplos passos no qual são colhidas células estaminais hematopoiéticas autólogas do animal e expurgadas de todas as células de cancro, a população de células de medula óssea restantes do paciente é depois erradicada através da administração de uma dose elevada de um Composto do Invento com ou sem acompanhamento de terapia de radiação de dose elevada, e o enxerto de células estaminais é perfundido de volta ao animal. São proporcionados cuidados de apoio enquanto a função da medula óssea é restaurada e o animal recupera.
5.10.2 TERAPIA MULTI-FARMACO PARA CANCRO O presente invento inclui utilizações para tratamento de cancros, por administração a um animal necessitado de uma quantidade eficaz de um Composto do Invento e de outro agente terapêutico que é um agente anticanceroso. Agentes anticancerosos adequados incluem, mas não estão limitados a, metotrexato, taxol, L-asparaginase, mercaptopurina, tioguanina, hidroxiureia, citarabina, ciclofosfamida, ifosfamida, nitrosoureias, cisplatina, carboplatina, mitomicina, dacarbazina, procarbazina, topotecano, mostardas de azoto, citoxano, etoposido, 5-fluorouracilo, BCNU, irinotecano, camptotecinas, bleomicina, doxorrubicina, idarrubicina, daunorrubicina, dactinomicina, plicamicina, mitoxantrona, asparaginase, vinblastina, vincristina, vinorrelbina, paclitaxel e docetaxel. Numa concretização preferida, o agente anticanceroso inclui, mas não está limitado a, um fármaco listado na Tabela 4. TABELA 4
Agentes alquilantes
Mostardas de azoto: ciclofosfamida ifosfamida trofosfamida clorambucilo
Nitrosoureias: carmustina (BCNU) lomustina (CCNU)
Alquilsulfonatos : bussulfano treossulfano
Triazenos: dacarbazina
Compostos contendo platina: cisplatina carboplatina
Alcaloides de planta
Alcaloides vinca: vincristina vinblastina vindesina vinorrelbina
Taxóides: paclitaxel docetaxol
Inibidores de ADN-topoisomerase
Epipodofilinas: etoposido teniposido topotecano 9-aminocamptotecina camptotecina crisnatol
Mitomicinas: mitomicina C
Antimetabolitos Antifolatos:
Inibidores de DHFR: metotrexato trimetrexato
Inibidores de WIMP ácido micofenólico desidrogenase:
tiazofurina ribavirina EI CAR
Inibidores de ribonuclótido- hidroxiureia redutase: deferoxamina
Análogos de pirimidina:
Análogos de uracilo: 5-fluorouracilo floxuridina doxifluridina raltitrexed
Análogos de citosina citarabina (ara C) arabinósido de citosina fludarabina
Análogos de purina: mercaptopurina tioguanina
Terapias hormonais:
Antagonistas de recetor:
Antiestrogénio tamoxifeno raloxifeno megestrol
Agonistas de LHRH: goserelina acetato de leuprolida
Antiandrogénios: flutamida bicalutamida
Retinóides/Deltoides
Análogos de Vitamina D3 EB 1089 CB 1093 KH 1060
Terapias fotodinâmicas: verteporfina (BPD-MA) ftalocianina fotossensibilizador Pc4 desmetoxi-hipocrelina A (2BA-2-DMHA)
Citoquinas: interferão- interferão- fator de necrose de tumor
Outros:
Inibidores de isoprenilação: lovastatina
Neurotoxinas dopaminérgicas: ião l-metil-4- fenilpiridínio
Inibidores do ciclo celular: estaurosporina
Actinomicinas: actinomicina D dactinomicina
Bleomicinas: bleomicina A2 bleomicina B2 peplomicina
Antraciclinas: daunorrubicina
Doxorrubicina (adriamicina) idarrubicina epirrubicina pirarrubicina zorrubicina mitoxantrona
Inibidores de MDR: verapamil
Inibidores de Ca2+ATPase: thapsigargin
5.11 TRATAMENTO DE DOENÇAS AUTOIMUNES
Os Compostos do Invento são úteis para matar ou inibir a replicação de uma célula que produz uma doença autoimune ou para tratamento de uma doença autoimune. Os Compostos do Invento podem ser utilizados de modo adequado numa variedade de cenários para o tratamento de uma doença autoimune num animal. Os Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando podem ser utilizados para entregar um Fármaco a uma célula alvo. Sem querer estar limitado pela teoria, numa concretização, o Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando associa-se a um antigénio na superfície de uma célula alvo, e o Composto do Invento é depois absorvido para o interior de uma célula alvo através de endocitose mediada por recetor. Uma vez no interior da célula, uma ou mais sequências peptídicas específicas dentro da unidade de Ligador são clivadas enzimaticamente ou hidroliticamente resultando na libertação de um Fármaco. 0 Fármaco libertado está depois livre para migrar no citosol e induzir atividades citotóxicas. Numa concretização alternativa, o Fármaco é clivado do Composto do Invento fora da célula alvo, e o Fármaco penetra subsequentemente na célula.
Numa concretização, a unidade de Ligando liga-se a um antigénio autoimune.
Noutra concretização, a unidade de Ligando liga-se a um antigénio autoimune que está sobre a superfície de uma célula.
Noutra concretização, a célula alvo é do tipo de células que produz o antigénio autoimune que causa a doença de que o animal necessita tratamento ou prevenção.
Numa concretização preferida, o Ligando liga-se a linfócitos ativados que estão associados ao estado de doença autoimune.
Numa concretização adicional, os Compostos do Invento matam ou inibem a multiplicação de células que produzem um anticorpo autoimune associado a uma doença autoimune particular.
Tipos particulares de doenças autoimunes que podem ser tratados com os Compostos do Invento incluem, mas não estão limitados a, perturbações relacionadas com linfócitos Th2 (e.g., dermatite atópica, asma atópica, rinoconjuntivite, rinite alérgica, síndrome de Omenn, esclerose sistémica e doença de enxerto versus hospedeiro); perturbações relacionadas com linfócitos Thl (e.g., artrite reumatóide, esclerose múltipla, psoríase, síndrome de Sjorgren, tiroidite de Hashimoto, doença de Grave, cirrose biliar primária, granulomatose de Wegener e tuberculose); perturbações relacionadas com linfócito B ativados (e.g., lúpus eritematoso sistémico, síndrome de Goodpasture, artrite reumatóide e diabetes de tipo I); e as divulgadas na Tabela 5. TABELA 5
Hepatite Crónica Ativa Doença de Addison Alveolite Alérgica Reação Alérgica Rinite Alérgica Sindrome de Alport Anafilaxia
Espondilite Anquilosante
Sindrome Antifosfolipida
Artrite
Ascariase
Aspergilose
Alergia Atópica
Dermatite Atrófica
Rinite Atrófica
Doença de Behcet
Pulmão de Bird-Fancier
Asma Brônquica
Sindrome de Caplan
Cardiomiopatia
Doença Celíaca
Doença de Chagas
Glomerulonefrite Crónica
Sindrome de Cogan
Doença de Aglutinina Fria
Infeção de Rubéola Congénita
Sindrome CREST
Doença de Crohn
Crioglobulinemia
Sindrome de Cushing
Dermatomiosite Lúpus Discoide Síndrome de Dressier Síndrome de Eaton-Lambert
Infeção por Ecovírus
Encefalomielite
Oftalmopatia Endócrina
Infeção por Vírus Epstein-Barr
Pulmoeira Equina
Eritematose Síndrome de Evan Síndrome de Felty
Fibromialgia
Ciclite de Fuchs
Atrofia Gástrica
Alergia Gastrointestinal
Artrite de Células Gigantes
Glomerulonefrite Síndrome Goodpasture
Doença de Enxerto v. Hospedeiro
Doença de Graves
Doença de Guillain-Barre
Tiroidite de Hashimoto
Anemia Hemolítica Púrpura de Henõch-Schonlein
Atrofia Adrenal Idiopática
Fibrite Pulmonar Idiopática
Nefropatia de IgA
Doenças Inflamatórias do Intestino Diabetes Mellitus dependente de Insulina Artrite Juvenil
Diabetes Mellitus Juvenil (Tipo I) Síndrome de Lambert-Eaton Laminite Líquen Plano
Hepatite Lupoide Lúpus
Lintopenia Doença de Meniere
Doença de Tecido Conjuntivo Misto Esclerose Múltipla Miastenia Grave Anemia Perniciosa Sindromes Poliglandulares Demência Pré-senil Agamaglobulinemia Primária Cirrose Biliar Primária Psoriase
Artrite Psoriática Fenómeno de Raynaud Aborto Recorrente Sindrome de Reiter Febre Reumática Artrite Reumatóide Sindrome de Sampter Esquistosomiase Sindrome de Schmidt Escleroderma Sindrome de Shulman Sindrome de Sjorgen Sindrome de Stiff-Man Oftalmia Simpática Lúpus Eritematoso Sistémico Arterite de Takayasu Arterite Temporal Tiroidite Trombocitopenia Tirotoxicose
Necrólise Epidérmica Tóxica
Resistência à Insulina Tipo B
Diabetes Mellitus Tipo I
Colite Ulcerosa
Uveite
Vitiligo
Macroglobulemia de Waldenstrom Granulomatose de Wegener
5.11.1 TERAPIA MULTI-FARMACO DE DOENÇAS AUTOIMUNES 0 presente invento inclui também utilizações para tratamento de uma doença autoimune, por administração a um animal necessitado de uma quantidade eficaz de um Composto do invento de outro agente terapêutico que é conhecido para o tratamento de uma doença autoimune. Numa concretização, o agente anti-doença autoimune inclui, mas não está limitado a, os agentes listados na Tabela 6. TABELA 6 ciclosporina
ciclosporina A micofenolato de mofetil sirolimo tacrolimo enanercept prednisona azatioprina metotrexato ciclofosfamida prednisona ácido aminocapróico cloroquina hidroxicloroquina hidrocortisona dexametasona clorambucilo
DHEA danazol bromocriptina meloxicam infliximab
5.12 TRATAMENTO DE DOENÇAS INFECIOSAS
Os Compostos do Invento são úteis para matar ou inibir a multiplicação de uma célula que produz uma doença infeciosa ou para tratamento de uma doença infeciosa. Os Compostos do Invento podem ser utilizados de modo adequado numa variedade de cenários para o tratamento de uma doença infeciosa num animal. Os Conjugados de Fármaco-Ligador-Ligando podem ser utilizados para entregar um Fármaco a uma célula alvo. Sem querer estar limitado pela teoria, numa concretização, o Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando associa-se a um antigénio na superfície de uma célula alvo, e o Composto do Invento é depois absorvido para o interior de uma célula alvo através de endocitose mediada por recetor. Uma vez no interior da célula, uma ou mais sequências peptídicas específicas dentro da unidade de Ligador são clivadas enzimaticamente ou hidroliticamente resultando na libertação de um Fármaco. 0 Fármaco libertado está depois livre para migrar no citosol e induzir atividades citotóxicas. Numa concretização alternativa, o Fármaco é clivado do Composto do Invento fora da célula alvo, e o Fármaco penetra subsequentemente na célula.
Numa concretização, a unidade de Ligando liga-se à célula da doença infeciosa.
Numa concretização, a célula da doença infeciosa é do tipo de doença infeciosa de que o animal necessita tratamento ou prevenção.
Numa concretização, os Compostos do Invento matam ou inibem a multiplicação de células que produzem uma doença infeciosa particular.
Tipos particulares de doenças infeciosas que podem ser tratadas com os Compostos do Invento incluem, mas não estão limitados a, os divulgados na Tabela 7. TABELA 7
Doenças Bacterianas:
Difteria
Pertussia
Bacteremia Oculta
Infeção do Trato Urinário
Gastroenterite
Celulite
Epiglotite
Traqueite
Hipertrofia Adenoide
Abcesso Retrofaringeo
Impetigo
Ectima
Pneumonia
Endocardite
Artrite Séptica
Pneumocócica
Peritonite
Bactermia
Meningite
Meningite Purulenta Aguda
Uretrite
Cervicite
Proctite
Faringite
Salpingite
Epididimite
Gonorreia Sífilis
Listeriose
Antraz
Nocardiose
Salmonela
Febre Tifoide
Disenteria
Conjuntivite
Sinusite
Brucelose
Tularemia Cólera
Peste Bubónica Tétano
Enterite Necrotizante Actinomicose
Infeções Anaeróbias Mistas Sífilis
Febre Remitente
Leptospirose
Doença de Lyme
Febre da Mordedura de Rato
Tuberculose
Linfadenite
Lepra
Clamídia
Pneumonia por Clamídica Tracoma
Conjuntivite de Inclusão
Doenças Fúngicas Sistémicas: Histoplamose Coccidioidomicose Blastomicose Esporotricose Criptococose Candidiase Sistémica Aspergilose Mucormicose Micetoma Cromomicose
Doenças por Riquétsias:
Tifo
Febre Maculosa das Montanhas Rochosas E r 1 i qu i o s e
Riquetsiose do Carrapato Oriental Rickettsialpox Febre Q Bartonelose Doenças Parasitárias:
Malária
Babesiose
Doença do Sono Africana
Doença de Chagas
Leishmaniose
Febre Dum-Dum
Toxoplasmose
Meningoencefalite
Queratite
Entamebiase
Giardiase
Criptosporidiase
Isosporiase
Ciclosporíase Microsporidiose Ascaríase
Infeção por tricurídeos Infeção por ancilóstomos Infeção por nematodes Larva Migrans Ocular Triquinose Verme da Guiné Filariase Linfática Loiase
Cegueira do Rio Dirofilariose Canina Esquistossomiase Pé-de-atleta
Fasciolose Pulmonar Oriental Fasciolose Hepática Oriental Fascioliase Fasciolopsiase Opistorquiase Infeções por Ténia Hidatidose Hidatidose Alveolar Doenças Virais:
Sarampo
Panencefalite Esclerosante Subaguda
Constipação Comum
Papeira
Rubéola
Roséola
Quinta Doença
Varicela
Infeção por Virus Sincicial Respiratório
Infeções da Garganta
Bronquiolite
Mononucleose Infeciosa
Poliomielite
Herpangina
Febre Aftosa
Doença de Bornholm
Herpes Genital
Verrugas Genitais
Meningite Asséptica
Miocardite
Pericardite
Gastroenterite Síndrome de Imunodeficiência Adquirida (SIDA) Síndrome de Reye Síndrome de Kawasaki
Influenza
Bronquite
Pneumonia "Andante" Virai Doença Respiratória Febril Aguda Febre Faringoconjuntival Aguda Queratoconjuntivite Epidémica Vírus Herpes Simplex 1 (HSV-1) Vírus Herpes Simplex 2 (HSV-2)
Zona
Doença de Inclusão Citomegálica Raiva
Leucoencefalopatia Multifocal Progressiva Kuru
Insónia Familiar Fatal Doença Creutzfeldt-Jakob Doença Gerstmann-Straussler-Scheinker Paraparésia Espástica Tropical
Encefalite Equina Ocidental Encefalite da Califórnia Encefalite de St. Louis Febre-amarela Dengue
Coriomeningite Linfocitica
Febre de Lassa
Febre Hemorrágica
Sindrome Pulmonar de Hantavirus
Infeções por Virus de Marburg
Infeções por Virus Ébola
Variola
5.12.1 TERAPIA MULTI-FÁRMACO DE DOENÇAS INFECIOSAS 0 presente invento inclui também utilizações para tratamento de uma doença infeciosa, por administração a um animal necessitado de um Composto do Invento e outro agente terapêutico que é um agente anti-doença infeciosa. Numa concretização, o agente anti-doença infeciosa é, mas não está limitado a, os agentes listados na Tabela 8. TABELA 8 Agentes Antibacterianos:
Antibióticos de -Lactama:
Penicilina G Penicilina V Cloxacilina Dicloxacilina Meticilina Nafcilina Oxacilina Ampicilina Amoxicilina
Bacampicilina Azlocilina Carbenicilina Mezlocilina Piperacillin Ticarcilina Aminoglicósidos: Amicacina Gentamicina Canamicina Neomicina Netilmicina Estreptomicina Tobramicina Macrblidos:
Az itromicina Claritromicina Eritromicina Lincomicina Clindamicina Tetraciclinas:
Demeclociclina Doxiciclina Minociclina Oxitetraciclina Tetraciclina Quinolonas: Cinoxacina Ácido Nalidixico Fluoroquinolonas: Ciprofloxacina Enoxacina Grepafloxacina
Levofloxacina Lomefloxacina Norfloxacina Ofloxacina Esparfloxacina Trovafloxicina
Polipéptidos :
Bacitracina Colistina Polimixina B Sulfonamidas:
Sulfisoxazole Sulfametoxazole Sulfadiazina Sulfametizole Sulfacetamida
Agentes Antibacterianos Diversos: Trimetoprim Sulfametazole Cloranfenicol Vancomicina Metronidazole Quinupristina Dalfopristina Rifampin Espectinomicina Nitrofurantolna Agentes Antivirais:
Agentes Antivirais Gerais: Idoxuradina Vidarabina Trifluridina Aciclovir
Famciciclovir
Penciciclovir
Valaciclovir
Ganciciclovir
Foscarnet
Ribavirina
Amantadina
Rimantadina
Cidofovir
Oligonucleótidos Anti-sentido
Imunoglobulinas
Interferões Fármacos para infeção por HIV:
Zidovudina
Didanosina
Zalcitabina
Estavudina
Lamivudina
Nevirapina
Delavirdina
Saquinavir
Ritonavir
Indinavir
Nelfinavir
5.13 OUTROS AGENTES TERAPÊUTICOS
As presentes utilizações podem ainda compreender um Composto do Invento e um agente terapêutico adicional ou seus sais ou solvatos farmaceuticamente aceitáveis. 0 Composto do Invento e o outro agente terapêutico podem atuar aditivamente ou, mais preferivelmente, sinergicamente. Numa concretização preferida, uma composição compreendendo um Composto do Invento é administrada concorrentemente com a administração de um ou mais agentes terapêuticos adicionais, que pode ser parte da mesma composição ou estar numa composição diferente da que compreende o Composto do Invento. Noutra concretização, um Composto do Invento é administrado antes ou subsequentemente à administração de outro(s) agente(s) terapêutico(s).
For tratamento de cancro, de uma doença autoimune ou de uma doença infeciosa, o outro agente terapêutico pode ser um agente antiemético. Agentes antieméticos adequados incluem, mas não estão limitados a, metoclopromida, domperidona, proclorperazina, prometazina, clorpromazina, trimetobenzamida, ondansetron, granisetron, hidroxizina, acetil-leucina monoetanolamina, alizaprida, azasetron, benzquinamida, bietanautina, bromoprida, buclizina, cleboprida, ciclizina, dimenidrinato, diphenidol, dolasetron, meclizina, metalatal, metopimazina, nabilona, oxiperndilo, pipamazina, escopolamina, sulpirida, tetra-hidrocanabinóis, tietilperazina, tioproperazina e tropisetron.
Noutra concretização, o outro agente terapêutico pode ser um fator de estimulação de colónias hematopoiético. Fatores de estimulação de colónias hematopoiéticos adequados incluem, mas não estão limitados a, filgrastim, sargramostim, molgramostim e eritropoietina alfa.
Ainda noutra concretização, o outro agente terapêutico pode ser um agente analgésico opioide ou não opioide. Agentes analgésicos opioides adequados incluem, mas não estão limitados a, morfina, heroina, hidromorfona, hidrocodona, oximorfona, oxicodona, metopon, apomorfina, normorfina, etorfina, buprenorfina, meperidina, loperamida, anileridina.
Os Exemplos que se seguem ilustram os conjugados ligando-fármaco. A sua divulgação é mais ampla do que o âmbito do presente invento conforme definido nas reivindicações e incluem informação sobre compostos análogos aos compostos úteis no presente invento. EXEMPLO 1: Preparação de composto 21
Diluiu-se Fmoc-(L)-vai-(L)-cit-PAB-OH (19) (14,61 g, 24,3 mmol, 1,0 eq., Patente dos E.U.A. N.2 6214345 de Firestone et al.) com DMF (120 mL, 0,2 M) e a esta solução adicionou-se dietilamina (60 mL). Monitorizou-se a reação por HPLC e verificou-se que ficou completa em 2 h. Concentrou-se a mistura reaccional e precipitou-se o resíduo resultante utilizando acetato de etilo (cerca de 100 mL) sob sonicação durante 10 min. Adicionou-se éter (200 mL) e sonicou-se adicionalmente o precipitado durante 5 min. Deixou-se a solução repousar durante 30 min sem agitação e depois filtrou-se e secou-se sob vácuo elevado para proporcionar Val-cit-PAB-OH, que foi utilizado no passo seguinte sem qualquer purificação adicional. Rendimento: 8,84 g (96%) . Diluiu-se Val-cit-PAB-OH (8,0 g, 21 mmol) com DMF (110 mL) e tratou-se a solução resultante com MC-OSu (Willner et al., Bioconjugate Chem. 4, 521, 1993, 6,5 g, 21 mmol, 1,0 eq.) . A reação ficou completa de acordo com HPLC após 2 h. Concentrou-se a mistura reaccional e precipitou-se o óleo resultante utilizando acetato de etilo (50 mL) . Após sonicação durante 15 min, adicionou-se éter (400 mL) e sonicou-se adicionalmente a mistura até todas as partículas grandes estarem quebradas. Filtrou-se depois a solução e secou-se o sólido para proporcionar Composto 20 como um sólido esbranquiçado. Rendimento: 11,63 g (96%); ES-MS m/z 757,9 [ΜΗ]-.
Diluiu-se Composto 20 (8,0 g, 14,0 mmol) com DMF (120 mL, 0,12 M) e à solução resultante adicionou-se bis (4-nitrofenil)carbonato (8,5 g, 28,0 mmol, 2,0 eq.) e di-isopropiletilamina (3,66 mL, 21,0 mmol, 1,5 eq.) . A reação ficou completa em 1 h de acordo com HPLC. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo que foi precipitado com EtOAc, e depois triturado utilizando EtOAc (cerca de 25 mL) . Purificou-se adicionalmente o soluto com éter (cerca de 200 mL) e triturou-se durante 15 min. Filtrou-se o sólido e secou-se sob vácuo elevado para proporcionar Composto 21 que era 93% puro de acordo com HPLC e utilizou-se no passo seguinte sem qualquer purificação adicional. Rendimento: 9,7 g (94%) . EXEMPLO 2 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 27
Diluiu-se Composto 26 (2,0 g, 2,31 mmol, 1,0 eq.) com diclorometano (30 mL) e à solução resultante adicionou-se bis(4-nitrofenil)carbonato (2,72 g, 8,94 mmol, 3,8 eq.) seguindo-se di-isopropiletilamina (1,04 mL, 5,97 mmol, 2,6 eq.) . A reação ficou completa em 3 d, de acordo com HPLC. Concentrou-se a mistura reaccional e triturou-se o resíduo resultante utilizando éter, depois filtrou-se e secou-se sob vácuo elevado para proporcionar Composto 27 como um sólido amarelo (2,37 g, 97%) . EXEMPLO 3 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 28
Diluiu-se Fmoc-phe-lys(Mtr)-OH (24) (0,5 g, 0,63 mmol,
Patente dos E.U.A. N.2 6214345 de Firestone et al.) com diclorometano até uma concentração de 0,5 M e a esta solução adicionou-se dietilamina numa quantidade que foi aproximadamente do volume da solução de Composto 24/diclorometano. Deixou-se a mistura reaccional agitar e monitorizou-se utilizando HPLC. Verificou-se por HPLC que a reação ficou completa em 3 h. Concentrou-se a mistura reaccional in vacuo, e diluiu-se a resíduo resultante com acetato de etilo e depois reconcentrou-se. Triturou-se o resíduo resultante utilizando éter e filtrou-se. Diluiu-se o sólido residual com diclorometano até uma concentração de 0,2 M, e à solução resultante adicionou-se MC-OSu (0,20 g, 0,63 mmol, 1,0 eq.) e di-isopropiletilamina (0,12 mL, 0,70 mmol, 1,1 eq.). Deixou-se a mistura reaccional agitar sob uma atmosfera de azoto durante 16 h, período após o qual a HPLC mostrou muito pouco material de partida. Concentrou-se depois a mistura reaccional e triturou-se o resíduo resultante utilizando éter para proporcionar Composto 28 como um sólido colorido. Rendimento: 100 mg (21 %); ES-MS m/z 757,9 [M-H]-. EXEMPLO 4
PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 19A
Diluiu-se Composto 19 (1,0 g, 1,66 mmol) com DMF (10 mL) e à solução resultante adicionou-se bis(4-nitrofenil)carbonato (1,0 g, 3,3 mmol, 2,0 eq.).
Tratou-se imediatamente a mistura reaccional com di-isopropiletilamina (0,43 mL, 2,5 mmol, 1,5 eq.) e deixou-se a mistura reaccional agitar sob uma atmosfera de árgon. A reação ficou completa em 2,5 h de acordo com HPLC. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo castanho-claro que foi precipitado utilizando acetato de etilo (5 mL) , e depois precipitado outra vez utilizando éter (cerca de 100 mL). Deixou-se o precipitado resultante em repouso durante 30 min, e depois filtrou-se e secou-se sob vácuo elevado para proporcionar Composto 19a como um pó esbranquiçado. Rendimento: 1,05 g (83%); ES-MS m/z 767,2 [M+H]+; UV max 215, 256 nm. EXEMPLO 5 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 49
O Composto 49 foi preparado de acordo com o Procedimento Geral D utilizando Fmoc-Me-val-val-dil-O-t-Bu 39 (0,40 g, 0,57 mmol) como o tripéptido e Boc-dap-nor 44 (0,26 g, 0,62 mmol, 1,1 eq.) como o dipéptido. Purificou-se a mistura reaccional utilizando cromatografia de coluna "flash" (coluna de sílica gel, eluente - EtOAc a 100%) . Foram eluídos dois produtos contendo Fmoc: o derivado de Fmoc de Composto 49 (Rf 0,17 em EtOAc a 100%) e o que se crê ser o derivado de Fmoc do acetato de TFA do Composto 49 (Rf 0,37) . Combinaram-se os produtos para proporcionar uma espuma branca que foi submetida ao Procedimento Geral E. A reação ficou completa após 2 h. Removeram-se os solventes para proporcionar um óleo que foi purificado utilizando cromatografia de coluna "flash" (eluente - diclorometano-metanol 9:1) para proporcionar Composto 49. EXEMPLO 6 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 50
O Composto 50 foi preparado fazendo reagir o tripéptido 42 e o dipéptido 48 de acordo com o Procedimento Geral D utilizando trietilamina (5,0 eq.) como a base. Após concentração da mistura reaccional, o resíduo resultante foi injetado diretamente numa coluna de HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TEA 0,1 M/CO2 a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Reuniram-se as frações relevantes e concentrou-se, e diluiu-se o resíduo resultante com 10 mL de diclorometano-éter (1:1) . Arrefeceu-se a solução até 0°C e adicionou-se gota a gota HC1 etéreo 1,0 M (aprox. 10 eq.) . Filtrou-se o precipitado, Composto 50, e secou-se e verificou-se por HPLC que estava substancialmente puro. Rendimento: 71 mg (43%); ES-MS m/z 731,6 [M+H]+; UV max 215, 238, 290 nm.
Anal. Cale. C4oH7oN506,4H20 · 2HC1: C, 54,84; H, 9,20; N, 9,59.
Encontrada: C, 55:12; H, 9,41; N, 9,82. EXEMPLO 7 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 51
O Composto 51 foi preparado fazendo reagir Fmoc-tripéptido 41 e dipéptido 46 de acordo com o Procedimento Geral D utilizando trietilamina como a base. Após concentração da mistura reaccional, o resíduo foi injetado diretamente numa coluna de HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TEA 0,1 M/CO2 a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% for 20 min). Reuniram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um intermediário sólido branco que foi utilizado no passo seguinte sem qualquer purificação adicional. ES-MS m/z 882, 9 [M+N]HU]+, 8 9 9, 9 [M+Na]+; UV max 215, 256 nm. A desproteção do intermediário sólido branco foi realizada de acordo com o Procedimento Geral E. Purificou-se o produto em bruto utilizando HPLC preparativa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TEA 0,1 M/CO2 a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Reuniram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 51 como um sólido pegajoso. ES-MS m/z 660, 1 [M+H]+, 682,5 [M+Na]+; UV max 215 nm. EXEMPLO δ PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 52
Diluíram-se Boc-dolaproina (0,33 g, 1,14 mmol) e (1S,2S)~ (-)-1,2-difeniletilenodiamina (0,5 g, 2,28 mmol, 2,0 eq.) com diclorometano, (10 mL) e à solução resultante adicionou-se trietilamina (0,32 mL, 2,28 mmol, 2,0 eq.)/· e depois DEPC (0,39 mL, 2,28 mmol, 2,0 eq.). Após 4 h, adicionou-se mais DEPC (0,39 mL) e deixou-se a mistura reaccional agitar de um dia para o outro. Concentrou-se a mistura reaccional e purificou-se o resíduo resultante utilizando HPLC preparativa (coluna Varian Dynamax Cis 21,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e água a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Reuniram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um intermediário de péptido sólido pegajoso amarelo que foi utilizado sem qualquer purificação adicional. Rf 0,15 (EtOAc a 100%); ES-MS m/z 482,4 [M+H]+; UV max 215, 256 nm.
Diluiu-se o intermediário de péptido pegajoso amarelo (0,24 g, 0,50 mmol) com diclorometano, e à solução resultante adicionaram-se di-isopropiletilamina (0,18 mL, 1,0 mmol, 2,0 eq.) e Fmoc-Cl (0,15 g, 0,55 mmol, 1,1 eq.) . Deixou-se a mistura reaccional agitar durante 3 h, tempo após o qual a HPLC mostrou uma reação completa. Concentrou-se a mistura reaccional até se obter um óleo, e diluiu-se o óleo com EtOAc e extraiu-se sucessivamente com ácido cítrico aquoso a 10%, água, bicarbonato de sódio aquoso saturado e salmoura. Secou-se a fase de EtOAc, filtrou-se e concentrou-se, e purificou-se o resíduo resultante utilizando cromatografia de coluna "flash" (sílica gel 230-400 mesh; eluente gradiente hexanos-EtOAc 4:1 a hexanos-EtOAc 1:1) para proporcionar Composto 45 como um sólido branco. Rendimento: 0,37 g (46% global); Rf 0,47
(hexanos-EtOAc 1:1); ES-MS m/z 704,5 [M+H]+, 721,4 [M+NH4]+; UV max 215, 25 6 nm. O Composto 52 foi preparado fazendo reagir tripéptido 42 (94 mg, 0,13 mmol) e composto de dipéptido 45 (65 mg, 0,13 mmol) de acordo com o Procedimento Geral D (utilizando 3,6 eq. de di-isopropiletilamina como a base). Após concentração da mistura reaccional, diluiu-se o resíduo resultante com EtOAc e lavou-se sucessivamente com ácido cítrico aquoso a 10%, água, bicarbonato de sódio aquoso saturado e salmoura. Secou-se a fase orgânica, filtrou-se e concentrou-se para proporcionar um resíduo sólido branco que foi diluído com diclorometano e desprotegido de acordo com o Procedimento Geral E. De acordo com HPLC, a reação ficou completa após 2 h. Concentrou-se a mistura reaccional até se obter um óleo. Diluiu-se o óleo com DMSO, e purificou-se a solução resultante utilizando uma HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA a 0,1% a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Isolaram-se dois produtos possuindo espectros de UV similares. O produto principal, Composto 52, foi obtido como um sólido esbranquiçado. Rendimento global: 24 mg (23%); ES-MS m/z 793,5 [M+H]+; UV max 215 nm. EXEMPLO 9 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 53
Adicionou-se Boc-fenilalanina (1,0 g, 3,8 mmol) a uma suspensão de 1,4-diaminobenzeno-HCl (3,5 g, 19,0 mmol, 5,0 eq.) em trietilamina (10,7 mL, 76,0 mmol, 20 eq.) e diclorometano (50 mL). À solução resultante adicionou-se DEPC (3,2 mL, 19,0 mmol, 5,0 eq.) através de seringa. A HPLC não mostrou qualquer Boc-phe restante após 24 h. Filtrou-se a mistura reaccional e concentrou-se o filtrado para proporcionar um sólido escuro. Repartiu-se o resíduo sólido escuro entre EtOAc-águal:1, e lavou-se a fase de EtOAc sequencialmente com água 3 salmoura. Secou-se a fase de EtOAc e concentrou-se para proporcionar um resíduo castanho-escuro/ avermelhado que foi purificado utilizando HPLC (coluna Varian Dynamax 41,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e água a 45 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um intermediário sólido castanho-avermelhado. Rendimento: 1,4 g (100%); ES-MS m/z 355, 9 [M+H]+; UV max 215, 265 nm; RMN (CDCI3) 7,48 (1H, s largo), 7,22-7,37 (5 H, m) , 7,12 (2 H, d, J= 8,7 Hz), 7,61 (2 H, d, J= 8,7 Hz), 5,19 (1H, s largo), 4,39-4,48 (1H, m), 3,49 (2 H, s), 3,13 (2 H, d, J= 5,7 Hz), 1,43 (9 H, s) .
Diluíram-se o intermediário sólido castanho-avermelhado (0,5 g, 1,41 mmol) e di-isopropiletilamina (0,37 mL, 2,11 mmol, 1,5 eq.) com diclorometano (10 mL) , e à solução resultante adicionou-se Fmoc-Cl (0,38 g, 1,41 mmol). Deixou-se a mistura reaccional agitar, e formou-se um precipitado sólido branco após alguns minutos. A reação ficou completa de acordo com HPLC após 1 h. Filtrou-se a mistura reaccional, e concentrou-se o filtrado para proporcionar um óleo. Precipitou-se o óleo com EtOAc, resultando num produto intermediário branco-avermelhado, que foi recolhido por filtração e seco sob vácuo. Rendimento: 0,75 g (93%); ES-MS m/z 578,1 [M+H]+, 595,6 [M+NH4] + .
Diluiu-se o intermediário branco-avermelhado (0,49 g, 0,85 mmol) com 10 mL de diclorometano, e depois tratou-se com 5 mL de ácido trifluoroacético. A reação ficou completa em 30 min de acordo com HPLC de fase reversa. Concentrou-se a mistura reaccional e precipitou-se o resíduo resultante com éter para proporcionar um sólido esbranquiçado. Filtrou-se o sólido esbranquiçado e secou-se para proporcionar um pó amorfo, que foi adicionado a uma solução de Boc-dap (0,24 g, 0,85 mmol) em diclorometano (10 mL). A esta solução adicionou-se trietilamina (0,36 mL, 2,5 mmol, 3,0 eq.) e PyBrop (0,59 g, 1,3 mmol, 1,5 eq.). Monitorizou-se a mistura reaccional utilizando HPLC de fase reversa. Após a reação estar completa, concentrou-se a mistura reaccional, e diluiu-se o resíduo resultante com EtOAc, e lavou-se sequencialmente com ácido cítrico aquoso a 10%, água, bicarbonato de sódio aquoso saturado, água e salmoura. Secou-se a fase de EtOAc (MgS04) , filtrou-se e concentrou-se. O resíduo resultante foi purificado utilizando cromatografia de coluna "flash" (sílica gel) para proporcionar Composto 47 como um pó esbranquiçado. Rendimento: 0,57 g (88%); ES-MS m/z 764,7 [M+NH4]+; UV max 215, 265 nm; RMN ΤΗ (DMSO-de) 10,0-10,15 (1H, m) , 9,63 (1H, s largo), 8,42 (1/2 H, d, J= 8,4 Hz), 8,22 (1/2 H, d, J = 8,4
Hz), 7,89 (2H, d, J= 7,2 Hz), 7,73 (2H, d, J= 7,6 Hz), 7,11- 7,55 (13H, m) , 4, 69-4,75 (1H, m) , 4,46 (2H, d, J = 6,8 Hz), 4,29 (1H, t, J = 6,4 Hz), 3,29 (3H, s), 2,77-3,47 (7H, m) , 2,48-2,50 (3 H, m), 2,25 (2/3 H, dd, J= 9,6, 7,2 Hz), 1,41-1,96 (4H, m), 1,36 (9H, s), 1,07 (1H, d, J = 6,4 Hz, isómero rotacional), 1,00 (1H, d, J = 6,4 Hz, isómero rotacional).
Fizeram-se reagir composto de tripéptido 42 (55 mg, 0,11 mmol) e composto de dipéptido 47 (85 mg, 0,11 mmol) de acordo com o Procedimento Geral D (utilizando 3,0 eq. de di-isopropiletilamina). Após concentração da mistura reaccional, diluiu-se o resíduo resultante com EtOAc, e lavou-se sequencialmente com ácido cítrico aquoso a 10%, água, bicarbonato de sódio aquoso saturado e salmoura. Secou-se a fase de EtOAc, filtrou-se e concentrou-se para proporcionar um óleo amarelo. Diluiu-se o óleo amarelo com diclorometano (10 mL) e desprotegeu-se de acordo com o Procedimento Geral E. De acordo com HPLC, a reação ficou completa após 2 h. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo. Diluiu-se o óleo com DMSO e purificou-se a solução de DMSO utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm x 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA a 0,1% a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 53 como um sólido esbranquiçado. Rendimento global: 42 mg (44% global); ES-MS m/z 837,8 [M+H]+, 858,5 [M+Na]+; UV max 215, 248 nm. EXEMPLO 10 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 54
O Composto 54 foi preparado de acordo com K. Miyazaki, et al. Chem. Pharm. Buli. 1995, 43(10), 1706-18. EXEMPLO 11 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 55
O Composto 55 foi sintetizado do mesmo modo que o Composto 54, mas utilizando FmocMeVal-IIe-Dil-tBu (40) em substituição de FmocMeVal-Val-Dil-tBu (39) como o material de partida. EXEMPLO 12 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 56
Diluiu-se éster de [(IS)-1-(azidometil)-2-feniletil]-1,1-dimetiletilo de ácido carbâmico (0,56 g, 2 mmol, preparado como descrito em J. Chem. Research (S), 1992, 391), com uma solução 4 M de HC1 em dioxano (10 mL) e deixou-se a solução resultante agitar durante 2 h à temperatura ambiente. Adicionou-se depois tolueno (10 mL) à mistura reaccional, concentrou-se a mistura reaccional e secou-se azeotropicamente o resíduo resultante sob vácuo utilizando tolueno (3 χ 15 mL) para proporcionar um sólido branco intermediário. ES-MS m/ z 177,1 [M+H]+.
Diluiu-se o sólido branco intermediário com diclorometano (5 mL) e à solução resultante adicionou-se sequencialmente N-Boc-dolaproina (0,58 g, 1 eq.), trietilamina (780 pL, 3 eq.) e DEPC (406 pL, 1,2 eq.), e deixou-se a mistura reaccional agitar durante 2 h à temperatura ambiente. Monitorizou-se o progresso da reação utilizando HPLC de fase reversa. Após a reação estar completa como determinado por HPLC, diluiu-se a mistura reaccional com diclorometano (30 mL), lavou-se a fase de diclorometano sucessivamente com ácido cítrico aquoso a 10% (20 mL) , NaHCCb aquoso saturado (20 mL) e água (20 mL) . Concentrou-se a fase de diclorometano e purificou-se o resíduo resultante através de cromatografia de coluna "flash" utilizando um gradiente em degrau de 0-5% metanol em diclorometano. Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um intermediário sólido, 0,78 g (88%). ES-MS m/z 446,1 [M+H]+, 468,3 [M+Na]+.
Diluíram-se o intermediário sólido (450 mg, 1 mmol) e tripéptido 42 (534 mg, 1,1 eq.) com uma solução a 50% de TFA em diclorometano (10 mL), e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 2 h à temperatura ambiente. Adicionou-se tolueno (10 mL) à mistura reaccional e concentrou-se a mistura reaccional. Secou-se azeotropicamente o intermediário de amina resultante utilizando tolueno (3 χ 20 mL) e secou-se sob vácuo de um dia para o outro.
Diluiu-se o intermediário de amina resultante com diclorometano (2 mL) e à solução resultante adicionou-se trietilamina (557 pL, 4 eq.), seguindo-se DEPC (203 pL, 1,4 eq.) . Deixou-se a mistura reaccional agitar durante 4 h à temperatura ambiente e monitorizou-se o progresso da reação utilizando HPLC. Após a reação estar completa, diluiu-se a mistura reaccional com diclorometano (30 mL) e lavou-se a fase de diclorometano sequencialmente utilizando NaHCCb aquoso saturado (20 mL) e NaCl aquoso saturado (20 mL). Concentrou-se a fase de diclorometano e purificou-se o resíduo resultante utilizando cromatografia de coluna "flash" num gradiente em degrau de 0-5% metanol em diclorometano. Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se e secou-se o resíduo resultante utilizando diclorometano:hexano (1:1) para proporcionar um intermediário sólido branco, 0,64 g (84%) . ES-MS m/z 757,5 [M+H]+.
Diluiu-se o intermediário sólido branco (536 mg, 0,73 mmol) com metanol e à solução resultante adicionou-se 10% Pd/C (100 mg). Colocou-se a mistura reaccional sob uma atmosfera de hidrogénio e deixou-se agitar à pressão atmosférica e temperatura ambiente durante 2 h. Monitorizou-se o progresso da reação por HPLC e estava completa em 2 h. Purgou-se o balão reaccional com árgon e filtrou-se a mistura reaccional através de um leito de Celite. Lavou-se o leito de Celite subsequentemente com metanol (30 mL) e concentraram-se os filtrados combinados para proporcionar um intermediário sólido cinzento que foi utilizado sem qualquer purificação adicional. Rendimento = 490 mg (91 %) . ES-MS m/z 731,6 [M+H]+, 366,6 [M+2H]2+/2 .
Diluíram-se o intermediário sólido cinzento (100 mg, 0,136, mmol) , ácido iV-Boc-4-aminobenzóico (39 mg, 1,2 eq.) e trietilamina (90 pL, 4 eq.) com diclorometano (2 mL) e à solução resultante adicionou-se DEPC (28 pL, 1,2 eq.). Deixou-se a mistura reaccional agitar à temperatura ambiente durante 2 h, e depois diluiu-se a mistura reaccional com diclorometano (30 mL) . Lavou-se a fase de diclorometano sequencialmente com NaHCCb aquoso saturado (20 mL) e NaCl aquoso saturado (20 mL). Concentrou-se depois a fase diclorometano e purificou-se o resíduo resultante através de cromatografia de coluna "flash" utilizando um gradiente em degrau de 0-5% em diclorometano. Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se e secou-se o resíduo resultante utilizando diclorometano:hexano (1:1) para proporcionar um intermediário sólido branco: ES-MS m/ z 950,7 [M+H] +.
Diluiu-se o intermediário sólido branco com uma solução a 50% de TFA em diclorometano e deixou-se agitar durante 2 h à temperatura ambiente. Adicionou-se tolueno (10 mL) à mistura reaccional e concentrou-se a mistura reaccional. Secou-se azeotropicamente o resíduo resultante utilizando tolueno (3 χ 15 mL), para proporcionar um óleo amarelo que foi purificado
utilizando HPLC preparativa (coluna Cis-RP Varian Dynamax, 5 pm, 100 À, gradiente linear de MeCN de 10 a 95% em tampão de carbonato de trietilamónio 0,05 M, pH 7,0, em 30 min com um caudal de 10 mL/min). Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se e secou-se azeotropicamente o resíduo resultante utilizando MeCN (3 x 20 mL), para proporcionar o Composto 56 como um sólido branco: 101 mg (87% em dois 2 passos) . ES-MS m/z 850, 6 [M+H] +, 872, 6 [M+Na] + . EXEMPLO 13 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 57
Diluíram-se Composto 49 (100 mg, 0,14 mmol), Composto 27 (160 mg, 0,15 mmol, 1,1 eq.) e HOBt (19 mg, 0,14 mmol, 1,0 eq.) com DMF (2 mL) . Após 2 min, adicionou-se piridina (0,5 mL) e monitorizou-se a mistura reaccional utilizando HPLC de fase reversa. Após 24 h não foram detetados nem Composto 49 nem Composto 27. Concentrou-se a mistura reaccional, e purificou-se o resíduo resultante utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 min χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e Et3N-C02 (pH 7) a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min). Reuniram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um sólido esbranquiçado intermediário. ES-MS m/z 1608,7 [M+H]+.
Diluiu-se o sólido esbranquiçado intermediário com MeCN/água/TFA numa proporção de 85:5:10, respetivamente. Monitorizou-se a mistura reaccional utilizando HPLC e a reação ficou completa em 3 h. Concentrou-se diretamente a mistura reaccional e purificou-se o resíduo resultante utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e 0,1% TFA a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) . Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 57 como um pó esbranquiçado. Rendimento: 46 mg (32% global); ES-MS m/z 1334,8 [M+H]+; UV max 215, 256 nm. EXEMPLO 14 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 58
Diluíram-se Composto 49 (1,69 g, 2,35 mmol), Composto 21 (2,6 g, 3,52 mmol, 1,5 eq.) e HOBt (64 mg, 0,45 mmol, 0,2 eq.) com DMF (25 mL) . Após 2 min, adicionou-se piridina (5 mL) e monitorizou-se a reação utilizando HPLC de fase reversa. Verificou-se que a reação estava completa em 24 h. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo escuro, que foi diluído com 3 mL de DMF. Purificou-se a solução de DMF utilizando cromatografia de coluna "flash" (sílica gel, eluente gradiente: 100% diclorometano até diclorometano- metanol 4:1) . Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um óleo que solidificou sob vácuo elevado para proporcionar uma mistura de Composto 58 e de Composto 49 não reagido como um sólido amarelo sujo (Rf 0,40 em diclorometano-metanol 9:1). Diluiu-se o sólido amarelo sujo com DMF e purificou-se utilizando HPLC de fase reversa preparativa (coluna Cis Varian Dynamax 41,4 mm χ 25 cm, 8 m, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA aquoso a 0,1% a 45 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) para proporcionar Composto 58 como um pó branco amorfo (Rf 0,40 em diclorometano-metanol 9:1) que era >95% puro por HPLC e que continha menos de 1% de
Composto 49. Rendimento: 1,78 g (57%); ES-MS m/z 1316,7 [M+H]+; UV max 215, 248 nm. EXEMPLO 15 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 59
Diluíram-se o sal de cloridrato de Composto 51 (11 mg, 15,2 mmol) e Composto 21 (11 mg, 15,2 mmol) com l-metil-2- pirrolidinona (1 mL) e à solução resultante adicionou-se di-isopropiletilamina (5,3 mL, 30,3 mmol, 2,0 eq.). Deixou-se a mistura agitar sob atmosfera de árgon durante 3 d enquanto se monitorizou utilizando HPLC. Após este tempo, permanecia ainda muito material de partida não reagido, adicionou-se HOBt (1,0 eq.) e deixou-se a mistura reaccional agitar durante 24 h, tempo após o qual não restou qualquer material de partida de acordo com HPLC. Concentrou-se a mistura reaccional e purificou-se o resíduo resultante utilizando HPLC preparativa (coluna Varian Dynamax Cis 21,4 mm χ 25 cm, 5 m, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e água a 20 mL/min de 10% a 100% durante 30 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min). Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 59 como um sólido branco. Rendimento: 13 mg (67%); ES-MS m/z 1287,2 [M+H]+, 1304,3 [M+NH4]+; UV max 215, 248 nm. EXEMPLO 16 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 60
Diluíram-se Composto 53 (9 mg, 10,8 pmol) e Composto 28 (5,2 mg, 10,8 pmol) com diclorometano (1 mL) e à solução resultante adicionou-se HATU (6,3 mg, 16,1 pmol, 1,5 eq.), seguindo-se piridina (1,3 pL, 16,1 pmol, 1,5 eq.). Deixou-se a mistura reaccional agitar sob atmosfera de árgon enquanto se monitorizou utilizando HPLC. A reação ficou completa após 6 h. Concentrou-se a mistura reaccional e diluiu-se o resíduo resultante com DMSO. Purificou-se a solução de DMSO utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 21,4 mm x 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA a 0,1% a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) e combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar um sólido esbranquiçado intermediário que era >95% puro de acordo com HPLC.
Diluiu-se o sólido esbranquiçado intermediário com diclorometano (2 mL) e tratou-se a solução resultante com TFA (0,5 mL) . Monitorizou-se a reação utilizando HPLC, e estava completa em 2 h. Concentrou-se a mistura reaccional, e diluiu-se o resíduo resultante com DMSO e purificou-se sob as mesmas condições como descrito em Exemplo 13, Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 60 como um pó esbranquiçado. Rendimento: 14,9 mg (90%); ES-MS m/ z 1304,6 [M+H]+; UV max 215, 275 nm. EXEMPLO 17 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 61
Diluíram-se sal de trifluoroacetato de Composto 53 (0,37 g, 0,39 mmol, 1,0 eq.) e Composto 18 (0,30 g, 0,58 mmol, 1,5 eq.) com DMF (5 mL, 0,1 M), e à solução resultante adicionou-se piridina (95 pL, 1,2 mmol, 3,0 eq.) . Adicionou-se então HATU (0,23 g, 0,58 mmol, 1,5 eq.) como um sólido e deixou-se a mistura reaccional agitar sob atmosfera de árgon enquanto se monitorizou utilizando HPLC. A reação progrediu lentamente, e 4 h mais tarde, adicionou-se 1,0 eq. de di-isopropiletilamina. A reação ficou completa em 1 h. Concentrou-se a mistura reaccional in vacuo e purificou-se o resíduo resultante utilizando HPLC preparativa (coluna Varian Dynamax C18 41,4 mm x 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA aquoso a 0,1% a 45 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min) para proporcionar um intermediário sólido cor-de-rosa desmaiado. O intermediário sólido cor-de-rosa foi diluído com DMF (30 mL) e à solução resultante adicionou-se dietilamina (15 mL) . Reação ficou completa por HPLC em 2 h. Concentrou-se a mistura reaccional e lavou-se o resíduo resultante duas vezes com éter. Secou-se o intermediário sólido sob vácuo elevado e depois utilizou-se diretamente no passo seguinte.
Diluiu-se o intermediário sólido com DMF (20 mL) e à solução resultante adicionou-se MC-OSu (0,12 g, 0,39 mmol, 1,0 eq.) . Após 4 d, concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo que foi purificado utilizando HPLC preparativa (coluna Varian Dynamax C18 41,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA aquoso a 0,1% a 45 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min). O Composto 61 foi isolado como um sólido em flocos brancos. Rendimento: 0,21 g (38% global); ES-MS m/z 1285, 9 [M+H]+; 1307,8 [M+Na]+; UV max 215, 266 nm. EXEMPLO 18 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 62
Diluíram-se Fmoc-val-cit-PAB-OCO-Pnp (19a) (0,65 g, 0,85 mmol, 1,1 eq.), Composto 49 (0,55 g, 0,77 mmol, 1,0 eq.) e HOBt (21 mg, 0,15 mmol, 2,0 eq.) com DMF (2,0 mL) e dissolveram utilizando sonicação. À solução resultante adicionou-se piridina (0,5 mL) e monitorizou-se a reação utilizando HPLC. Após 24 h, adicionou-se di-isopropiletilamina (1,0 eq.) e deixou-se a mistura reaccional em repouso sem agitação durante 24 h. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo resíduo. O resíduo de óleo foi purificado utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Varian Dynamax 41,4 mm χ 25 cm, 5 pm, 100 À, utilizando uma operação em gradiente de
MeCN e TFA a 0,1% a 45 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min.). Reuniram-se as frações desejadas e concentrou-se para dar um óleo que foi precipitado com éter para proporcionar um sólido esbranquiçado intermediário. Rendimento: 0,77 g (74%); ES-MS m/z 1345,7 [M+H]+; UV max 215, 254 nm.
Desprotegeu-se o sólido esbranquiçado intermediário (cerca de 85 mg) utilizando dietilamina (1 mL) em DMF (3 mL). Após 1 h, a reação ficou complete. Concentrou-se a mistura reaccional, e precipitou-se o resíduo resultante em 1 mL de EtOAc seguindo-se a adição de éter em excesso (cerca de 20 mL). Filtrou-se o intermediário de amina e secou-se sob vácuo elevado e utilizou-se no passo seguinte sem qualquer purificação adicional.
Retomou-se o intermediário de amina (70 mg, 61 pmol, 1,0 eq.) em DMF (10 mL) e à solução resultante adicionaram-se sequencialmente ácido bromoacetamidocapróico (17 mg, 67 pmol, 1,1 eq.), PyBrop (32 mg, 67 pmol, 1,1 eq.) e di-isopropiletilamina (16 pL, 92 pmol, 1,5 eq.) . Após 24 h, adicionaram-se mais 1,0 eq. de ácido bromoacetamidocapróico. Parou-se a reação após 30 h. Concentrou-se a mistura reaccional até se obter um óleo e purificou-se o óleo utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Synergi MaxRP C12 21,4 mm x 25 cm, 5 pm, 80 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA a 0,1% a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min.) . Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 62 como um sólido branco. Rendimento: 23 mg (27%); ES-MS m/z 1356,7 [M+H]+; UV max 215, 247 nm. EXEMPLO 19 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 63
Submeteu-se Fmoc-val-cit-PAB-OC(O)-Me-val-val-dil-dap-nor (cerca de 48 mg, obtido de acordo com Exemplo 18) a remoção de Fmoc por tratamento com dietilamina (1 mL) em DMF (3 mL). Após 1 h, a reação ficou completa. Concentrou-se a mistura reaccional e precipitou-se o resíduo resultante utilizando 1 mL de EtOAc seguindo-se adição de éter em excesso (cerca de 20 mL). Filtrou-se o intermediário de amina e secou-se sob vácuo elevado e utilizou-se no passo seguinte sem qualquer purificação adicional.
Diluiu-se o intermediário de amina (35 pmol, 1,1 eq.) com DMF (2 mL) e à solução resultante adicionou-se sequencialmente maleimido-PEG ácido (Frisch, B.; Boeckler, C.; Schuber, F. Biocon jugate Chem. 1996, 7, 180-6; 7,8 mg, 32 pmol, 1,0 eq.), DEPC (10,7 pL, 64 pmol, 2,0 eq.) e di-isopropiletilamina (11,3 pL, 64 pmol, 2,0 eq.) . A reação ficou completa em 15 min de acordo com HPLC. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um óleo. Diluiu-se o óleo com 1 mL de DMSO e purificou-se utilizando HPLC preparativa de fase reversa (coluna Synergi MaxRP C12 21,4 mm x 25 cm, 5 pm, 80 À, utilizando uma operação em gradiente de MeCN e TFA a 0,1% a 20 mL/min de 10% a 100% durante 40 min seguindo-se MeCN a 100% durante 20 min). Combinaram-se as frações relevantes e concentrou-se para proporcionar Composto 63 como um sólido branco.
Rendimento: 16,2 mg (34%); ES-MS m/z 1348, 6 [M+H]+; UV max 215, 247 nm.
Os Exemplos 20-25 descrevem a conjugação dos anticorpos monoclonais cBR96 e cAClO a um Composto de Fármaco-Ligador. Estes anticorpos foram obtidos como descrito em Bowen, et al., J. Immunol. 1993, 151, 5896; e Trail, et al., Science 1993, 261, 212, respetivamente. O número de porções de Fármaco-Ligador por Ligando num Conjugado de Fármaco-Ligador-Ligando varia de reação de conjugação para reação de conjugação, mas varia tipicamente de cerca de 7 a cerca de 9, particularmente quando o Ligando é cBR96 ou cACl0. EXEMPLO 20 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 64
O anticorpo cBR96 (24 mg) foi reduzido utilizando DTT como descrito no Procedimento Geral L, e depois determinaram-se o número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo como descrito no Procedimento Geral M e Procedimento Geral N, respetivamente.
Resultado: [Ab] =4,7 mg/mL = 29,4 μΜ; [tiol] = 265, μΜ; SH/Ab =9,0 (O intervalo de SH/Ab típico é de cerca de 7,8 a cerca de 9,5).
Conjugação:
Adicionou-se uma solução de PBS/DTPA (2,2 mL), como aqui definido acima, a 4,2 mL de anticorpo reduzido e arrefeceu-se a solução resultante até 0°C utilizando um banho de gelo. Num balão separado, diluíram-se 130,5 pL de uma solução de reserva de Composto 57 (8,4 mM em DMSO, 8,5 mol de Composto 57 por mol de anticorpo reduzido) com MeCN (1,48 mL, pré-arrefecido a 0°C num banho de gelo) . Adicionou-se rapidamente a solução de Composto 57 em MeCN à solução de anticorpo e agitou-se a mistura reaccional utilizando um equipamento de vórtice durante 5-10 s, depois retornou ao banho de gelo e deixou-se agitar a 0°C durante 1 h, tempo após o qual se adicionaram depois 218 pL de uma solução de cisteína (100 mM em PBS/DTPA) para extinguir a reação. Guardaram-se 60 pL da mistura reaccional extinta como uma amostra "qrm".
Enquanto a reação prosseguia, colocaram-se três colunas PD10 (Sephadex G25, disponíveis na Sigma-Aldrich, St. Louis,
Mo.) numa sala arrefecida e equilibraram-se com PBS (que tinha sido pré-arrefecido a 0°C utilizando um banho de gelo). A mistura reaccional extinta, que continha Composto 64, foi concentrada até <3 mL por ultracentrifugação utilizando dois dispositivos de filtração centrífugos Ultrafree 4 (membrana de corte de peso molecular 30K; Millipore Corp.; Bedford, MA; utilizados de acordo com as instruções do fabricante) que foram pré-arrefecidos até 4°C num frigorífico e eluiu-se a mistura reaccional concentrada através das três colunas PD10 pré-arrefecidas utilizando PBS como eluente (1 mL para cada coluna). Recolheu-se o conjugado eluído num volume de 1,4 mL por coluna, para um volume eluído total de 4,2 mL. Filtrou-se depois a solução de Conjugado eluído utilizando um filtro de 0,2 micron na extremidade de uma seringa, retiraram-se 250 pL de solução de Conjugado para análise, e congelou-se o restante da solução de Conjugado em frascos esterilizados.
Determinaram-se a concentração de Composto 64, o número de moléculas de Fármaco por Anticorpo, a quantidade de Fármaco-Ligador extinto e a percentagem de agregados utilizando os Procedimentos Gerais P, N, O e Q, respetivamente.
Resultados de Ensaio:
[Composto 64] =3,8 mg/mL % de Agregado = vestígios
Titulação de Tiol Residual: Tióis Residuais = 1,7/Ab. Fármaco/Ab ~ 9,0 - 1,7 = 7,3 Fármaco-Ligador Extinto: não detetável
Rendimento: 4,2 mL, 16 mg, 66%. EXEMPLO 21 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 65
0 anticorpo cAClO (24 mg) foi reduzido utilizando DTT como descrito no Procedimento Geral L, e depois determinaram-se o número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo como descrito no Procedimento Geral M e Procedimento Geral N, respetivamente.
Resultados: [Ab] =4,9 mg/mL = 30,7 μΜ; [tiol] = 283 μΜ; 9,2 SH/Ab
Conjugação:
Adicionou-se uma solução de PBS/DTPA (2,2 mL) como agui definido acima, a 4,2 mL de anticorpo reduzido e arrefeceu-se a solução resultante até 0°C utilizando um banho de gelo. Num balão separado, diluiram-se 125 pL de uma solução de reserva de Composto 57 (8,4 mM em DMSO, 8,5 mol de Composto 57 por mol de anticorpo reduzido) com MeCN (1,48 mL, pré-arrefecido a 0°C num banho de gelo) . Adicionou-se rapidamente a solução de Composto 57 em MeCN à solução de anticorpo e agitou-se a mistura reaccional utilizando um eguipamento de vórtice durante 5-10 s, retornou ao banho de gelo e deixou-se agitar a 0°C durante 1 h, tempo após o gual se adicionaram depois 218 pL de uma solução de cisteina (100 mM em PBS/DTPA) para extinguir a reação. Guardaram-se 60 pL da mistura reaccional extinta como uma amostra "qrm".
Enquanto a reação prosseguia, colocaram-se quatro Colunas PD10 (Sephadex G25, disponíveis na Sigma-Aldrich, St. Louis, Mo.) numa sala arrefecida e equilibraram-se com PBS (que tinha sido pré-arrefecido a 0°C utilizando um banho de gelo). A mistura reaccional extinta, que continha Composto 65, foi concentrada até <3 mL por ultracentrifugação utilizando dois dispositivos de filtração centrífugos Ultrafree 4 (membrana de corte de peso molecular 30K; Millipore Corp.; Bedford, MA; utilizados de acordo com as instruções do fabricante) que foram pré-arrefecidos até 4°C num frigorifico e eluiu-se a mistura reaccional concentrada através das quatro colunas PD10 pré-arrefecidas utilizando PBS como eluente (1 mL para cada coluna). Recolheu-se o conjugado eluído num volume de 1,4 mL por coluna, para um volume eluído total de 5,6 mL. Filtrou-se depois a solução de Conjugado eluído utilizando um filtro de 0,2 micron na extremidade de uma seringa, retiraram-se 250 pL de solução de Conjugado para análise, e congelou-se o restante da solução de Conjugado em frascos esterilizados.
Determinaram-se depois a concentração de Composto 65, o número de moléculas de Fármaco por Anticorpo, a quantidade de Fármaco-Ligador extinto e a percentagem de agregados utilizando os Procedimentos Gerais P, N, O e Q, respetivamente.
Resultados de Ensaio:
[Composto 65] =2,8 mg/mL % de Agregado = vestígios
Titulação de Tiol Residual: Tióis Residuais = 1,6/Ab. Fármaco/Ab ~ 9,2 - 1,6 = 7,6 Fármaco-Ligador não ligado covalentemente: não detetável
Rendimento: 5,6 mL, 15,7 mg, 65%. EXEMPLO 22 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 66
0 anticorpo cBR96 (24 mg) foi reduzido utilizando DTT como descrito no Procedimento Geral L, e depois determinaram-se o número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo como descrito no Procedimento Geral M e Procedimento Geral N, respetivamente.
Resultado: [Ab] =3,7 mg/mL = 23,1 μΜ; [tiol] = 218 μΜ; 9,4 SH/Ab
Conjugação:
Adicionou-se uma solução de PBS/DTPA (2,2 mL) como aqui definido acima, a 4,2 mL de anticorpo reduzido e arrefeceu-se a solução resultante até 0°C utilizando um banho de gelo. Num balão separado, diluiram-se 145,5 pL de uma solução de reserva de Composto 58 (8,3 mM em DMSO, 9,0 mol de Composto 58 por mol de anticorpo reduzido) com MeCN (1,48 mL, pré-arrefecido a 0°C num banho de gelo) . Adicionou-se rapidamente a solução de Composto 58 em MeCN à solução de anticorpo e agitou-se a mistura reaccional utilizando um equipamento de vórtice durante 5-10 s, depois retornou ao banho de gelo e deixou-se agitar a 0°C durante 1 h, tempo após o qual se adicionaram depois 249 pL de uma solução de cisteina (100 mM em PBS/DTPA) para extinguir a reação. Guardaram-se 60 pL da mistura reaccional extinta como uma amostra "qrm".
Enquanto a reação prosseguia, colocaram-se três colunas PD10 (Sephadex G25, disponíveis na Sigma-Aldrich, St. Louis,
Mo.) numa sala arrefecida e equilibraram-se com PBS (que tinha sido pré-arrefecido a 0°C utilizando um banho de gelo). A mistura reaccional extinta, que continha Composto 66, foi concentrada até <3 mL por ultracentrifugação utilizando dois dispositivos de filtração centrífugos Ultrafree 4 (membrana de corte de peso molecular 30K; Millipore Corp.; Bedford, MA; utilizados de acordo com as instruções do fabricante) que foram pré-arrefecidos até 4°C num frigorífico e eluiu-se a mistura reaccional concentrada através das três colunas PD10 pré-arrefecidas utilizando PBS como eluente (1 mL para cada coluna). Recolheu-se o conjugado eluído num volume de 1,4 mL por coluna, para um volume eluído total de 4,2 mL. Filtrou-se depois a solução de Conjugado eluído utilizando um filtro de 0,2 micron na extremidade de uma seringa, retiraram-se 250 pL de solução de Conjugado para análise, e congelou-se o restante da solução de Conjugado em frascos esterilizados.
Determinaram-se a concentração de Composto 66, o número de moléculas de Fármaco por Anticorpo, a quantidade de Fármaco-Ligador extinto e a percentagem de agregados utilizando os Procedimentos Gerais P, N, O e Q, respetivamente.
Resultados de Ensaio:
[Composto 66] =3,0 mg/mL % de Agregado = vestígios
Titulação de Tiol Residual: Tióis Residuais = 0,4/Ab. Fármaco/Ab ~ 9,5 - 0,4 = 9,1 Fármaco-Ligador não ligado covalentemente: 0,3% de aduto 57-Cys
Rendimento: 5,3 mL, 15,9 mg, 66%. EXEMPLO 23 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 67
0 anticorpo cAClO (24 mg) foi reduzido utilizando DTT como descrito no Procedimento Geral L, e depois determinaram-se o número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo como descrito no Procedimento Geral M e Procedimento Geral N, respetivamente.
Resultado: [Ab] =3,9 mg/mL = 24,5 μΜ; [tiol] = 227 μΜ; 9,3 SH/Ab
Conjugação
Adicionou-se uma solução de PBS/DTPA (2,2 mL) como aqui definido acima, a 4,2 mL de anticorpo reduzido e arrefeceu-se a solução resultante até 0°C utilizando um banho de gelo. Num balão separado, diluiram-se 154,4 pL de uma solução de reserva de Composto 58 (8,3 mM em DMSO, 9,0 mol de Composto 58 por mol de anticorpo reduzido) com MeCN (1,46 mL, pré-arrefecido a 0°C num banho de gelo) . Adicionou-se rapidamente a solução de Composto 58 em MeCN à solução de anticorpo e agitou-se a mistura reaccional utilizando um equipamento de vórtice durante 5-10 s, depois retornou ao banho de gelo e deixou-se agitar a 0°C durante 1 h, tempo após o qual se adicionaram depois 249 pL de uma solução de cisteina (100 mM in PBS/DTPA) para extinguir a reação. Guardaram-se 60 pL da mistura reaccional extinta como uma amostra "qrm".
Enquanto a reação prosseguia, colocaram-se quatro colunas PD10 (Sephadex G25, disponíveis na Sigma-Aldrich, St. Louis,
Mo.) numa sala arrefecida e equilibraram-se com PBS (que tinha sido pré-arrefecido a 0°C utilizando um banho de gelo). A mistura reaccional extinta, que continha Composto 67, foi concentrada até <3 mL por ultracentrifugação utilizando dois dispositivos de filtração centrífugos Ultrafree 4 (membrana de corte de peso molecular 30K; Millipore Corp; Bedford, MA; utilizados de acordo com as instruções do fabricante) que foram pré-arrefecidos até 4°C num frigorífico e eluiu-se a mistura reaccional concentrada através das quatro colunas PD10 pré-arrefecidas utilizando PBS como eluente (1 mL para cada coluna). Recolheu-se o conjugado eluído num volume de 1,4 mL por coluna, para um volume eluído total de 5,6 mL. Filtrou-se depois a solução de Conjugado eluído utilizando um filtro de 0,2 micron na extremidade de uma seringa, retiraram-se 250 pL de solução de Conjugado para análise, e congelou-se o restante da solução de Conjugado em frascos esterilizados.
Determinaram-se a concentração de Composto 67, o número de moléculas de Fármaco por Anticorpo, a quantidade de Fármaco-Ligador extinto e a percentagem de agregados utilizando os Procedimentos Gerais P, N, O e Q, respetivamente.
Resultados de Ensaio:
[Composto 67] =3,0 mg/mL % de Agregado = vestígios
Titulação de Tiol Residual: Tióis Residuais = 0,5/Ab. Fármaco/Ab ~ 9,5 - 0,5 = 9,0 Fármaco-Ligador extinto: 1,1% de aduto 58-Cys
Rendimento: 5,3 mL, 15,9 mg, 66 %. EXEMPLO 24 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 68
0 anticorpo cBR96 (24 mg) foi reduzido utilizando DTT como descrito no Procedimento Geral L, e depois determinaram-se o número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo como descrito no Procedimento Geral M e no Procedimento Geral N, respetivamente.
Resultado: [Ab] =4,4 mg/mL = 27,2 μΜ; [tiol] = 277 μΜ; 10,2 SH/Ab
Conjugação:
Diluiu-se o anticorpo reduzido com DMSO (1,47 mL, pré-arrefecido a 0°C num banho de gelo) tal que a solução resultante tinha 20% em DMSO. Deixou-se a solução agitar durante 10 min a 0°C, depois adicionaram-se rapidamente 127,8 pL de uma solução de reserva de Composto 60 (solução 7,6 mM em DMSO; 9 mol de Composto 60 por mol de anticorpo) . Agitou-se rapidamente a mistura reaccional utilizando um equipamento de vórtice e retornou-se ao banho de gelo e deixou-se agitar a 0 °C durante 1 h, tempo após o qual se adicionaram depois 213 pL de uma solução de cisteina (100 mM em PBS/DTPA) para extinguir a reação. Guardaram-se 60 pL da mistura reaccional extinta como uma amostra "qrm".
Enquanto a reação prosseguia, colocaram-se quatro colunas PD10 (Sephadex G25, disponíveis na Sigma-Aldrich, St. Louis, Mo.) numa sala arrefecida e equilibraram-se com PBS (que tinha sido pré-arrefecido a 0°C utilizando um banho de gelo) . A mistura reaccional extinta, que continha Composto 68, foi concentrada até <3 mL por ultracentrifugação utilizando dois dispositivos de filtração centrífugos Ultrafree 4 (membrana de corte de peso molecular 30K; Millipore Corp.; Bedford, MA; utilizados de acordo com as instruções do fabricante) que foram pré-arrefecidos até 4°C num frigorífico e eluiu-se a mistura reaccional concentrada através das quatro colunas PD10 pré-arrefecidas utilizando PBS como eluente (1 mL para cada coluna). Recolheu-se o conjugado eluído num volume de 1,4 mL por coluna, para um volume eluído total de 5,6 mL. Filtrou-se depois a solução de Conjugado eluído utilizando um filtro de 0,2 micron na extremidade de uma seringa, retiraram-se 250 pL de solução de Conjugado para análise, e congelou-se o restante da solução de Conjugado em frascos esterilizados.
Determinaram-se a concentração de Composto 68, o número de moléculas de Fármaco por Anticorpo, a quantidade de Fármaco-Ligador extinto e a percentagem de agregados utilizando os Procedimentos Gerais P, N, O e Q, respetivamente.
Porque as absorvâncias de Composto 60 e anticorpo se sobrepõem grandemente, a determinação espectrofotométrica da concentração de conjugado requer a medição da absorvância a 270 e 280 nm. A concentração molar de conjugado é dada pela fórmula seguinte: [Conjugado] = (OD28oxl, 0 8e_5-OD27ox 8,20e-6) xfator de diluição, onde os valores l,08e~5 e 8,20e~6 são calculados a partir dos coeficientes de extinção molar do fármaco e do anticorpo, que são estimados como: e27o Composto 60 = 2,06e4 e27o cBR96 = l,87e5 e28o Composto 60 = l,57e4 e28o cBR96 = 2,24e5
Resultados de Ensaio:
[Composto 68] =3,2 mg/mL % de Agregado = vestígios
Titulação de Tiol Residual: Tióis Residuais = 1,0/Ab. Fármaco/Ab ~ 10,2 - 1,0= 9,2 Fármaco-Ligador extinto: vestígios
Rendimento: 5,6 mL, 17,9 mg, 75%. EXEMPLO 25 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 69
0 anticorpo cAClO (24 mg) foi reduzido utilizando DTT como descrito no Procedimento Geral L, e depois determinaram-se o número de tióis por anticorpo e a concentração de anticorpo como descrito no Procedimento Geral M e no Procedimento Geral N, respetivamente.
Resultado: [Ab] =4,8 mg/mL = 29,8 μΜ; [tiol] = 281 μΜ; 9,4 SH/Ab
Conjugação:
Diluiu-se o anticorpo reduzido com DMSO (1,47 mL, pré-arrefecido a 0°C num banho de gelo) tal que a solução resultante tinha 20% em DMSO. Deixou-se a solução agitar durante 10 min a 0°C, e depois adicionaram-se rapidamente 140 pL de uma solução de reserva de Composto 60 (solução 7,6 mM em DMSO; 8,5 mol de Composto 60 por mol de anticorpo). Agitou-se rapidamente a mistura reaccional utilizando um equipamento de vórtice e retornou-se ao banho de gelo e deixou-se agitar durante lha 0°C, tempo após o qual se adicionaram depois 213 pL de uma solução de cisteína (100 mM em PBS/DTPA) para extinguir a reação. Guardaram-se 60 pL da mistura reaccional extinta como uma amostra "qrm".
Enquanto a reação prosseguia, colocaram-se quatro colunas PD10 (Sephadex G25, disponíveis na Sigma-Aldrich, St. Louis, Mo.) numa sala arrefecida e equilibraram-se com PBS (que tinha sido pré-arrefecido a 0°C utilizando um banho de gelo) . A mistura reaccional extinta, que continha Composto 69, foi concentrada até <3 mL por ultracentrifugação utilizando dois dispositivos de filtração centrífugos Ultrafree 4 (membrana de corte de peso molecular 30K; Millipore Corp.; Bedford, MA; utilizados de acordo com as instruções do fabricante) que foram pré-arrefecidos até 4°C num frigorifico e eluiu-se a mistura reaccional concentrada através das quatro colunas PD10 pré-arrefecidas utilizando PBS como eluente (1 mL para cada coluna) . Recolheu-se o conjugado eluído num volume de 1,4 mL por coluna, para um volume eluído total de 5,6 mL. Filtrou-se depois a solução de Conjugado eluído utilizando um filtro de 0,2 micron na extremidade de uma seringa, retiraram-se 250 pL de solução de Conjugado para análise, e congelou-se o restante da solução de Conjugado em frascos esterilizados.
Determinaram-se a concentração de Composto 69, o número de moléculas de Fármaco por Anticorpo, a quantidade de Fármaco-Ligador extinto e a percentagem de agregados utilizando os Procedimentos Gerais P, N, O e Q, respetivamente.
Porque as absorvâncias de Composto 60 e anticorpo se sobrepõem grandemente, a determinação espectrofotométrica da concentração de conjugado requer a medição da absorvância a 270 e 280 nm. A concentração molar de conjugado é dada pela fórmula seguinte: [Conjugado] = (Οϋ28οχ1, 0 8e~5-OD27ox 8,20e~6) xfator de diluição, onde os valores l,08e~5 e 8,20e~6 são calculados a partir dos coeficientes de extinção molar do fármaco e do anticorpo, que são estimados como: e27o Composto 60 = 2,06e4 e27o cAClO = 2,10e5 e28o Composto 60 = l,57e4 e28o cAClO = 2,53e5
Resultados de Ensaio: [Composto 69] =3,0 mg/mL % de Agregado = vestígios
Titulação de Tiol Residual: Tióis Residuais = 0,7/Ab. Fármaco/Ab ~ 9,4 - 0,7 = 8,7 Fármaco-Ligador extinto: vestígios
Rendimento: 5,6 mL, 16,8 mg, 70%. EXEMPLO 26 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 75
Diluiu-se (4-nitrobenzil)fosfonato de dietilo (1,1 g, 4,02 mmol) em THF anidro (4 mL) e arrefeceu-se a mistura resultante até 0°C. Adicionou-se hidreto de sódio (0,17 g, 4,22 mmol, 1,05 eq., dispersão a 60% em óleo mineral) e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 5 min. Neste momento, a libertação de gás a partir da mistura reaccional tinha cessado. Adicionou-se depois 2,2-dimetil-l,3-dioxan-5-ona (0,52 g, 4,02 mmol) em 1 mL de THF anidro à mistura reaccional através de seringa e depois deixou-se a mistura reaccional aquecer até à temperatura ambiente com agitação. Após 30 min, adicionou-se mais THF (1 mL) para ajudar a diluir o precipitado resultante e agitou-se a mistura resultante durante 30 min, e foi transferido para uma ampola de decantação contendo EtOAc (10 mL) e água (10 mL) . Recolheu-se a fase orgânica, lavou-se com salmoura e lavaram-se os extratos aquosos combinados com acetato de etilo (2x) . Secaram-se os extratos orgânicos combinados sobre MgSCh, filtrou-se e concentrou-se para proporcionar um óleo em bruto vermelho-escuro que foi purificado utilizando cromatografia "flash" numa coluna de sílica gel (300 χ 25 mm) e eluição com hexanos-EtOAc 9:1 para proporcionar um intermediário sólido amarelado. Rendimento: 0,57 g (57%); Rf 0,24 (hexanos-EtOAc 9:1); UV max 225, 320 nm. RMN 3H (CDC13) 8,19 (2H, d*T = 8,4 Hz), 7,24 (2H, d, J = 8,4 Hz), 6,33 (1H, s) , 4,62 (2H, s), 4,42 (2H, s), 1,45 (6H, s) . RMN 13C (CDC13) 146, 6, 142,7, 141,3, 129,4, 123, 9, 121,1, 99, 9, 64,4, 60, 8, 24,1.
Diluiu-se o intermediário sólido amarelado (0,25 g, 1,0 mmol) utilizando THF (20 mL), tratou-se a mistura resultante com 1 N HC1 (10 mL) e deixou-se agitar durante 5 min. À mistura reaccional, adicionaram-se dietiléter (150 mL) e água e transferiu-se a mistura resultante para uma ampola de decantação. Secou-se a fase orgânica (MgSCg) filtrou-se e concentrou-se para dar um óleo. Retomou-se depois o diol resultante em THF-metanol (1:1, 4 mL cada, 0,3 M) seguindo-se a adição de Níquel de Raney (100 pL, 100 pL/mmol de grupo nitro, suspensão a 50% em água) e hidrazina (74 pL, 1,5 eq.) A libertação de gás ocorreu enquanto se aqueceu a mistura reaccional a 50-60°C. Após 30 min e 1 h, adicionaram-se de cada vez 1,5 eq. de hidrazina. Filtrou-se a mistura amarela através de celite e lavou-se com metanol. Concentrou-se o filtrado para proporcionar o Composto 75 como um óleo que mais tarde cristalizou como um sólido amarelo. Rendimento: 0,14 g (78%); UV max 215, 260 nm. RMN 3Η (DMSO) 7,00 (2H, d *7 = 8.4 Hz), 6,51 (2H, d, J = 8,4 Hz), 6,33 (1H, s) , 5,20 (2H, s largo), 4,64 (2 H, d largo), 4,04 (2H, s) . RMN 13C (DMSO) 147,2, 138,1, 129, 6, 126, 1, 124, 6, 113,7, 63, 6, 57,5. EXEMPLO 27 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 79
A uma mistura de Composto 75 (BHMS, 0,12 g, 0,67 mmol) em metanol-diclorometano (1:2,4,5 mL total) adicionou-se Fmoc-Val-Cit (0,33 g, 0,67 mmol) seguindo-se EEDQ (0,25 g, 1,0 mmol, 1.5 eq.) e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 15 horas sob atmosfera inerte. Adicionaram-se depois mais EEDQ (1,5 eq.) e Fmoc-Val-Cit (1,0 eq.) devido à presença de BHMS não reagido e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 2 dias e concentrou-se. Triturou-se o resíduo resultante utilizando éter para proporcionar um intermediário sólido castanho. ES-MS m/z 659 [M+H]+, 681 [M+Na]+; UV max 215, 270 nm. RMN ϊΗ (DMSO) 10,04 (1H, s), 8,10 (1H, dJ = 7,2
Hz), 7,87 (2H, d, J = 7,6 Hz), 7,72 (2H, t, J = 7,6 Hz), 7,55 (2H, d, J = 8,4 Hz), 7,37-7,43 (3H, m), 7,30 (2H, t, J = 7,2
Hz), 7,24 (2H, d, J = 8,4 Hz), 6,47 (1H, s), 5,96 (1H, t, J= 5,2 Hz), 5,39 (1H, s), 4,83 (1H, t, J= 5,2 Hz), 4,78 (1H, t, J = 5,2 Hz), 4,40 (1H, dd, J = 5,2, 8,0 Hz), 4,20-4,30 (3H, m) , 4,11 (2H, d, J = 4,4 Hz), 4,04 (2H, d, J = 5,2 Hz), 3,91 (1H, t, J = 7,2 Hz), 2,84-3, 06 (2H, m) , 1,91-2,03 (1H, m) , 1,29-1,74 (4H, m), 0,86 (3H, d, J = 6,8 Hz), 0,84 (3H, d, J = 6,8 Hz) .
Diluiu-se o intermediário sólido castanho com DMF (10 mL) e tratou-se a mistura resultante com dietilamina (5 mL) , deixou-se agitar durante 1 hora e concentrou-se para proporcionar um sólido castanho que foi seco sob vácuo elevado durante 3 dias. Triturou-se o sólido castanho utilizando EtOAc (10 mL) e precipitou-se outra vez utilizando éter (80 mL) para proporcionar um resíduo em bruto que foi filtrado através de um funil de vidro sinterizado e seco in vacuo para proporcionar um intermediário castanho-claro. ES-MS m/z 436 [M+H]+, 458 [M+Na]+; UV max 215, 270 nm.
Diluiu-se o intermediário castanho-claro com DMF (10 mL) e tratou-se com éster de hidroxi-succinimida de ácido 6-maleimidocapróico (0,16 g, 0,53 mmol, 1 eq.). Deixou-se a mistura reaccional agitar durante 18 h, adicionou-se mais di-isopropiletilamina (1,0 eq) seguindo-se éster de hidroxi-succinimida de ácido 6-maleimidocapróico adicional (0,5 eq.). Deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 4 horas, tempo após o qual, a HPLC indicou que o material de partida tinha sido consumido. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um resíduo em bruto que foi triturado utilizando EtOAc (10 mL) e depois outra vez precipitado utilizando éter (75 mL) . Recolheu-se o precipitado e secou-se de um dia para o outro para proporcionar um intermediário em pó castanho/alaranjado. Rendimento global: 0,42 g (quant.) . ES-MS m/z 629 [M+H]+, 651 [M+Na]+; UV max 215, 270 nm.
Dissolveu-se parcialmente o intermediário em pó castanho/alaranjado (0,40 g, 0,64 mmol) em DMF (20 mL) e à mistura resultante adicionaram-se bis (4-nitrofenil)carbonato (0,98 g, 3,2 mmol, 5,0 eq.) e di-isopropiletilamina (0,45 mL, 2,5 mmol, 4,0 eq.). Deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante cerca de 4 horas, tempo após o qual A monitorização por HPLC mostrou que não restava qualquer material de partida e que a mistura reaccional continha 2 produtos numa proporção de 3:2 (o bis-carbonato desejado e a 1,3-dioxan-2-ona, respetivamente). Concentrou-se a mistura reaccional e triturou-se o resíduo resultante utilizando EtOAc (10 mL) , depois precipitou-se outra vez utilizando éter (80 mL) num único vaso. Filtrou-se a mistura EtOAc-éter e secou-se o sólido para proporcionar Composto 79 como um pó castanho que foi utilizado sem qualquer purificação adicional. EXEMPLO 28 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 80
Suspenderam-se Composto 49 (202 mg, 0,22 mmol, 2,0 eq., 80% puro) e Composto 79 (180 mg, 0,11 mmol, 1,0 eq, 60% puro) em DMF seca (2 mL, 0,1 M) e à mistura resultante adicionou-se HOBt (3 mg, 22 pmol, 0,2 eq.) seguindo-se piridina (400 pL, V4 da DMF v/v). Deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 16 h, diluiu-se com DMSO (2 mL) e purificou-se a mistura resultante utilizando HPLC preparativa (coluna Cis-RP, 5 pm, 100 À, gradiente linear de MeCN em água 10 a 100% em 40 min seguindo-se 20 min a 100%, com um caudal de 50 mL/min) para proporcionar Composto 80 como um sólido branco.
Rendimento: 70 mg (18%). MALDI-TOF MS m/z 2138,9 [M+Na]+, 2154,9 [M+K]+. EXEMPLO 29 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 81
O Composto 81 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 1 e utilizando Fmoc-(D)-vai-(L)-cit-PAB-OH em substituição do Composto 19. EXEMPLO 30 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 82
Composto 82 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 1 e utilizando Fmoc- (L)-vai-(D)-cit-PAB-OH em substituição do Composto 19. EXEMPLO 31 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 83
0 Composto 83 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 1 e utilizando Fmoc-(D)-vai-(D)-cit-PAB-OH em substituição do Composto 19. EXEMPLO 32 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 84
0 Composto 84 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 14 e utilizando Composto 81 em substituição do Composto 21. EXEMPLO 33 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 85
0 Composto 85 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 14 e utilizando Composto 82 em substituição do Composto 21. EXEMPLO 34 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 86
0 Composto 86 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 14 e utilizando Composto 83 em substituição do Composto 21. EXEMPLO 35 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 87
Diluiu-se uma mistura de ácido 6-maleimidocapróico (1,00 g, 4,52 mmol, 1,0 eq.), álcool p-aminobenzílico (1,11 g, 9,04 mmol, 2,0 eq.) e EEDQ (2,24 g, 9,04 mmol, 2,0 eq.) em diclorometano (13 mL) . Agitou-se a mistura reaccional resultante durante cerca 16 h, depois concentrou-se e purificou-se utilizando cromatografia de coluna "flash" num gradiente em degrau de 25-100% de EtOAc em hexanos para proporcionar um intermediário sólido. Rendimento: 1,38 g (96 %) ; ES-MS m/z 317,22 [M+H]+, 339, 13 [M+Na]+; UV max 215, 246 nm.
Diluíram-se o intermediário sólido (0,85 g, 2,69 mmol, 1,0 eq.) e bis (4-nitrofenil)carbonato (2,45g, 8,06 mmol, 3,0 eq.) em DMF (10 mL) e à mistura resultante adicionou-se di-isopropiletilamina (0,94 mL, 5,37 mmol, 2,0 eq.). Agitou-se a mistura reaccional resultante durante cerca de 1 h, tempo após o qual a RP-HPLC indicou que a reação estava completa. Concentrou-se a mistura reaccional in vacuo, e triturou-se o resíduo em bruto resultante utilizando dietiléter (cerca de 250 mL) para proporcionar um intermediário sólido branco após filtração. Rendimento: 1,25 g (96 %) ; UV max 215, 252 nm.
Diluíram-se o intermediário sólido branco (259 mg, 0,0538 mmol, 1,0 eq.), MMAE (464 mg, 0, 646 mmol, 1,2 eq.), e HOBt (14,5 mg, 0,108 mmol, 0,2 eq.) em piridina/DMF (1:5, 6 mL) e agitou-se a mistura reaccional resultante durante cerca de 10 h, tempo após o qual a RP-HPLC mostrou que a reação estava incompleta. Concentrou-se a mistura reaccional, diluiu-se o resíduo em bruto resultante utilizando DMF (3 mL), e à mistura resultante adicionou-se di-isopropiletilamina (0,469 mL, 0,538 mmol, 1,0 eq.) e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante cerca de 16 h. Purificou-se a mistura reaccional diretamente utilizando Chromatotron® (cromatografia de camada fina radial) com um gradiente em degrau (0-5% metanol em diclorometano), para proporcionar o Composto 87 como um sólido branco. Rendimento: 217 mg (38 %); ES-MS m/z 1082,64 [M+Na]+; UV max 215, 248 nm. EXEMPLO 36 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 88
Suspendeu-se Fmoc-val-cit (Patente dos E.U.A. N.2 6214345 de Firestone et al.) em diclorometano (50 mL) e tratou-se a mistura resultante com HBr a 33% em HOAc (20 mL) , que foi adicionado através de pipeta durante cerca de 5 minutos. Após agitação durante cerca de 10 minutes, constatou-se que a reação estava completa utilizando HPLC. Diluiu-se a mistura reaccional com gelo (cerca de 500 mL) e adicionou-se lentamente bicarbonato de sódio aquoso saturado enquanto se agitava até a libertação de gás cessar. Filtrou-se a massa gelatinosa resultante e lavou-se com água destilada para proporcionar um sólido que foi seco sob vácuo elevado na presença de P2O5 durante 24 h. O intermediário em pó castanho resultante (Fmoc-val-cit-PAB-Br) estava cerca de 70% puro por HPLC e foi utilizado sem qualquer purificação adicional.
Dissolveram-se o intermediário em pó castanho (30 mg, 40,6 pmol) e Composto 53 (34 mg, 40,6 pmol) em DMF (1 mL) e à mistura resultante adicionou-se di-isopropiletilamina (21 pL, 0,12 mmol, 3,0 eq.) . Deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 6 h, diluiu-se com DMSO (1 mL) e purificou-se de imediato utilizando HPLC preparativa (coluna C12-RP, 5 pm, 100 À, gradiente linear de MeCN em água (contendo 0,1% de ácido fórmico) de 10 a 100% em 40 min seguindo-se 20 min a 100 %, com um caudal de 25 mL/min) para proporcionar como um intermediário em pó castanho ligeiro. Rendimento: 5 mg (8%); ES-MS m/z 1420 [M+H]+, 1443 [M+Na]+; UV max 205, 258 nm.
Diluiu-se o intermediário em pó castanho ligeiro (4 mg, 9,5 pmol) utilizando DMF (1 mL) e tratou-se a mistura resultante com dietilamina (0,5 mL) . A reação resultante estava completa em 1 h de acordo com HPLC. Concentrou-se a mistura reaccional para proporcionar um resíduo sólido oleoso que foi triturado com éter (3x) para proporcionar um resíduo em bruto. Diluiu-se o resíduo em bruto com DMF (1 mL) e à mistura resultante adicionou-se éster de hidroxi-succinimida de ácido 6-maleimidocapróico (3 mg, 9,5 pmol). Deixou-se a mistura reaccional resultante agitar à temperatura ambiente durante cerca de 16 h. Purificou-se a mistura reaccional diretamente utilizando HPLC preparativa (coluna C12-RP, 5 pm, 100 À, gradiente linear de MeCN em água (contendo 0,1% de ácido fórmico) de 10 a 100% em 40 min seguindo-se 20 min a 100%, com um caudal de 25 mL/min) para proporcionar Composto 88 como um sólido castanho ligeiro. Rendimento: 3,9 mg (quant.); ES-MS m/z 1391 [M+H]+; UV max 205, 250 nm. EXEMPLO 37 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 89
Preparação de Composto 89A
0 Composto 89A foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 9 e utilizando o tripéptido Composto 43 em substituição do tripéptido Composto 42, intermediário.
Preparação de Composto 89
Suspenderam-se Composto 89A (0,13 g, 0,15 pmol, 1,0 mmol), Composto 21 (0,12 g, 0,17 mmol, 1,1 eq.) e HOBt (4 mg, 31 pmol, 0,2 eq.) em DMF/piridina (2 mL/0,5 mL, respetivamente). Deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante cerca de 4h, depois adicionou-se di-isopropiletilamina (27 pL, 0,15 mmol, 1,0 eq.) e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante cerca de 54 h e concentrou-se in vacuo. Diluiu-se o óleo em bruto resultante com DMSO e purificou-se utilizando HPLC preparativa (coluna C12-RP, 5 pm, 100 À, gradiente linear de MeCN em água (contendo 0,1% de TFA) de 10 a 100% em 40 min seguindo-se 20 min a 100%, com um caudal de 25 mL/min) para proporcionar um óleo amarelo que foi retomado numa quantidade mínima de diclorometano e precipitando com éter em excesso para proporcionar Composto 89 como um pó castanho. Rendimento: 0,15 mg (68%). ES-MS m/z 1449, 14 [M+H]+; UV max 215, 258 nm. EXEMPLO 38 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 90
Diluíram-se dicloridrato de 1,4-fenilenodiamina (3,06 g, 17 mmol) e dicarbonato de di-t-butilo (3, 69 g, 17 mmol) com 30 mL de diclorometano. À mistura resultante adicionou-se di-isopropiletilamina (8,83 ml, 50,7 mmol, 3,0 eq.) e deixou-se a mistura reaccional resultante agitar durante 1 h. Transferiu-se a mistura reaccional para uma ampola de separação e lavou-se a fase orgânica com água (3 χ 10 ml). Armazenou-se a fase orgânica a 4°C durante cerca de 15 h e ocorreu a cristalização do produto. Recolheram-se os cristais por filtração e lavaram-se com diclorometano frio para proporcionar Composto 90 como um sólido cristalino. (1,2 g, 34%) . UV max 215, 250 nm. RMN ΤΗ (DMSO) 8,78 (1H, s largo), 7,04 (2H, d largo>J = 7,2 Hz), 6,43 (2H, d, J = 7,2 Hz), 4,72 (2H, s), 1,41 (9H, s). EXEMPLO 39 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 91
Ajustou-se uma solução de cAClO (10 mg/mL em citrato de sódio 25 mM, cloreto de sódio 250 mM, 0,02% de Tween 80, pH 6,5) a pH 7,5 por adição de fosfato de sódio dibásico 0,3 M. A esta solução de cAClO de pH ajustado, adicionou-se EDTA até uma concentração final de 5 mM. Pré-aqueceu-se depois a solução de cAClO até 37 °C por incubação numa estufa de temperatura controlada. Após a temperatura da solução de cAClO ter sido equilibrada a 37°C, adicionou-se DTT (a partir de uma solução de reserva 10 mM) até atingir uma proporção molar final de DTT-para-cACl0 de cerca de 3,0 na reação de redução (utilizou-se um peso molecular de 148500 Da para cAClO). Deixou-se depois a reação de redução prosseguir durante 2 horas a 37°C.
No final da incubação, arrefeceu-se a mistura reaccional de redução até uma temperatura interna de 2 a 8°C num banho de água-gelo. Manteve-se a temperatura da solução a 2 a 8°C ao longo dos passos de conjugação restantes. Submeteu-se a mistura reaccional de redução arrefecida a diafiltração de volume constante para remover o DTT em excesso utilizando uma membrana de 30 kDa e mudou-se o tampão para solução salina tamponada com fosfato, pH 7,4 (PBS). Após diafiltração, determinou-se a concentração de tiol livre no cAClO reduzido e diafiltrado utilizando o Procedimento Geral Μ. A conjugação é depois realizada por adição de um excesso molar de 15% de Composto 58 (a partir de uma solução de reserva de 13 mg/mL em DMSO) em relação aos tióis totais determinados utilizando o Procedimento Geral M. Adicionou-se mais DMSO à mistura reaccional de conjugação até atingir uma concentração em DMSO final de 15% (v/v) . Deixou-se a reação de conjugação prosseguir durante um total de 30 min.
No final da reação de conjugação, extinguiu-se qualquer composto de Fármaco-Ligador em excesso não reagido por adição de cisteina em excesso (excesso molar de 2X em relação aos tióis totais determinados utilizando o Procedimento Geral M, realizado no cAClO reduzido e diafiltrado) para produzir a mistura reaccional extinta. Purifica-se depois a mistura reaccional extinta para ficar livre de contaminantes de moléculas pequenas através de diafiltração de volume constante utilizando uma membrana de 30 kDa e mudou-se o tampão para PBS, pH 7,4. Após diafiltração, esterilizou-se o conjugado por filtração utilizando um filtro de 0,22 micron para proporcionar Composto 91 numa solução límpida incolor. EXEMPLO 40 PREPARAÇÃO DE COMPOSTO 92
O Composto 92 foi preparado utilizando o método descrito no Exemplo 39 utilizando uma quantidade de DTT (a partir de uma solução de reserva de 10 mM) que proporciona uma proporção molar final de DTT-para-cACl 0 de cerca de 1,5 na reação de redução.
6.2 EXPERIÊNCIAS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO
As linhas de células utilizadas foram carcinoma da mama humano H3396 (positivas em antigénio cBR96, negativas em antigénio cAClO), carcinoma colorretal humano HCT-116 (negativas em antigénios cBR96 e cAClO) e linfoma de células grandes anaplásicas de humano Karpas (ALCL) (negativas em antigénio cBR96, positivas em antigénio cAClO). Estas linhas de células estão disponíveis na ATCC. A linha de células L540 de Doença de Hodgkin (HD) CD30-positiva e a linha de células de ALCL Karpas 299 foram obtidas na Deutsche Sammlung von Mikroorganism und Zellkulturen GmbH (Braunschweig, Alemanha). A L540cy, um derivado da linha de HD L540 adaptado para crescimento de xenoenxerto, foi fornecida pelo Dr. Phil Thorpe (U of Texas Southwestern Medical Center, Dallas, TX). As linhas de células foram cultivadas em meios RPMI-1640 (Life Technologies Inc., Gaithersburg, MD) suplementados com 10% de soro fetal de bovino. Células H3396 em RPMI contendo 10% de soro fetal de bovino (referido como meio) foram plaqueadas em placas de 96 poços com aproximadamente 3000-10 000 células/poço e deixaram-se aderir de um dia para o outro. A linha de células Karpas não aderentes foi plaqueada com aproximadamente 10 000 células/poço no início do ensaio. Adicionaram-se em triplicado várias concentrações de compostos ilustrativos do invento em meio e, após os tempos indicados nas FIGS. 1-7, removeu-se o meio, e lavaram-se as células três vezes com meio fresco. Após um período de incubação de 96 horas a 37°C, adicionou-se Azul de Alamar e determinou-se a viabilidade celular 4 horas mais tarde como descrito por Ahmed S.A., Gogal R.M. Jr., Walsh J.E., J. Immunol. Methods, 170, 211-224, 1994.
Utilizaram-se ratinhos CB-17 SCID (Harlan, Indianapolis, IN) para as experiências in vivo. EXEMPLO 41
DADOS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO
Na FIG. 1 mostram-se os efeitos citotóxicos do Composto 49 e do Composto 53 em células de carcinoma da mama humano H3396. Os dados mostram que, após exposição durante 1 hora, o Composto 53 é mais citotóxico do que o Composto 49 para concentrações de até 0,01 mM. Os compostos mostram citotoxicidade substancialmente igual para concentrações entre 0,01 mM e 1,0 mM. EXEMPLO 42
DADOS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO A FIG. 2 mostra os efeitos citotóxicos dos Compostos 64, 65, 68 e 69 em células de carcinoma da mama humano H3396 (positivas em antigénio cBR96, negativas em antigénio cAClO). Os dados mostram que os Compostos 64 e 68 demonstram citotoxicidade similar e significativa, enquanto os Compostos 65 e 69 são menos eficazes, mas no entanto citotóxicos contra células H3396 neste ensaio particular. EXEMPLO 43
DADOS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO A FIG. 3 mostra os efeitos citotóxicos dos Compostos 64, 65, 68 e 69 em células de carcinoma colorretal humano HCT-116 (negativas em antigénio cBR96, negativas em antigénio cAClO).
Os dados ilustram que nenhum dos Compostos 64, 65, 68 e 69 é citotóxico em relação às células HCT-116 negativas em antigénio neste ensaio. EXEMPLO 44
DADOS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO A FIG. 4 ilustra a citotoxicidade dos Compostos 66 e 68 em células de carcinoma da mama humano H3396 (positivas em antigénio cBR96). Os dados mostram que ambos os Compostos são altamente citotóxicos para concentrações superiores a 0,1 mM e que o Composto 68 demonstra maior citotoxicidade do que o Composto 66 para concentrações entre 0,01 mg/mL e 0,4 mg/mL. EXEMPLO 45
DADOS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO A FIG. 5 ilustra a citotoxicidade dos Compostos 66, 68 e 69 em linfoma de células grandes anaplásicas de humano Karpas (negativas em antigénio cBR96, positivas em antigénio cAClO). Os dados mostram que o Composto 69 foi mais citotóxico em relação a células Karpas quando comparado com os Compostos 68 e 66 neste ensaio. O Composto 69 demonstrou uma citotoxicidade significativa para concentrações superiores 0,001 mM, enquanto o Composto 66 e o Composto 68 não foram citotóxicos para concentrações inferiores a 1,0 mg/mL. EXEMPLO 46
DADOS DE CITOTOXICIDADE IN VITRO A FIG. 6 ilustra a citotoxicidade de Composto 66 e 67 às 2 h e 96 h em células de carcinoma da mama humano H3396 (positivas em antigénio cBR96, negativas em antigénio cAClO). Os dados mostram que o Composto 66 é altamente citotóxico para concentrações superiores a 100 mg/mL na exposição de curto prazo (2 h) , e para concentrações superiores a 100 mg/mL durante a exposição de longo prazo (96 h). O Composto 67 não demonstrou citotoxicidade contra células H3396 neste ensaio para concentrações até 1000 mg/mL.
Procedimento Geral S: Ensaio in vivo de Conjugados de Fármaco-Ligador-Anticorpo selecionados. Para a linha de células de adenocarcinoma humano L2987, implantaram-se ratinhos nus atímicos (8-10 semanas de idade) com células de tumor ou tumores de xenoenxerto. Para o modelo de linfoma de células grandes anaplásicas de humano Karpas, implantaram-se ratinhos CB-17 SCID subcutaneamente com 5 χ 106 células. Em ambos os modelos de tumor, iniciou-se a terapia após os tumores terem atingido um volume médio de 100 mm3. Injetaram-se grupos de ratinhos com um dos Compostos 66-69 em solução salina tamponada com fosfato intravenosamente de 4 em 4 dias para um total de 6 injeções para animais de L2987 e 2 injeções para animais de Karpas. Calculou-se o volume de tumor volume utilizando a fórmula: 0,5 (dimensão mais longa χ dimensão perpendicular2) . Retiraram-se os ratinhos do estudo quando os seus tumores tinham aproximadamente 1000 mm3, ponto a partir do qual os tamanhos médios de tumor para o grupo particular deixaram de ser representados no gráfico. EXEMPLO 47 EFICÁCIA TERAPÊUTICA IN VIVO EM TUMORES L2987 A FIG. 7 mostra os efeitos terapêuticos dos Compostos 66-69 em tumores de xenoenxerto de adenocarcinoma do pulmão de humano L2987 (positivas em antigénio cBR96, negativas em antigénio cAClO) implantados em ratinhos nus atímicos. Seguiu-se o Procedimento Geral S utilizando tumores de pulmão humano L2987 subcutâneos (a partir de uma passagem in vivo) . Administraram-se aos ratinhos injeções com um dos Compostos 66, 67, 68 ou 69 com intervalos de quatro dias para um total de 6 injeções. A primeira injeção foi dada aos 15 dias após implante do tumor. Os dados ilustram que a administração de Composto 66 e de Composto 68 reduziu nitidamente o volume de tumor e não se verificou qualquer crescimento adicional em ratinhos tratados durante aproximadamente 25 dias após a última injeção. O Composto 67 e o Composto 69 foram menos eficazes mas no entanto inibiram a multiplicação de células de tumor nos ratinhos tratados. O ensaio foi interrompido em animais que receberam os Compostos 67 e 69 quando o volume de tumor excedeu os 1000 mm3. EXEMPLO 48
EFICÁCIA TERAPÊUTICA IN VIVO EM TUMORES KARPAS A Fig. 8 mostra os efeitos terapêuticos de Compostos 66-69 em tumores de xenoenxerto de linfoma de células grandes anaplásicas de humano Karpas (positivas em antigénio cAClO, negativas em antigénio cBR96) implantados em ratinhos nus. Seguiu-se o Procedimento Geral S utilizando o modelo de linfoma de células grandes anaplásicas de humano Karpas. Ratinhos CB-17 SCID foram implantados subcutaneamente com 5 χ 106 células. Os ratinhos foram doseados intravenosamente com um dos Compostos 66, 67, 68 ou 69 com intervalos de quatro dias para um total de 2 injeções com inicio no dia 8. Os dados ilustram que os Compostos 67 e 69 induziram regressões completas, e que os tumores progrediram em animais que receberam substancialmente quantidades equivalentes de Compostos 66 e 68. EXEMPLO 49
DETERMINAÇÃO DA CITOTOXICIDADE DE COMPOSTOS SELECIONADOS EM CÉLULAS CD30“ E CD30+
Após a sua caracterização física, avaliou-se a citotoxicidade in vitro dos Compostos 67, 91 e 92 em células Karpas 299 CD30+ e Raji CD3CC utilizando o ensaio de Azul de Alamar como descrito acima. Representou-se graficamente a percentagem de células viáveis em função da concentração para cada molécula para determinar a IC50 (definida como a concentração de mAb que deu 50% de morte celular). O Composto 67 demonstrou atividade contra células Karpas 299 com uma IC50 de 4 ng/mL. A IC50 era inversamente proporcional à carga de fármaco uma vez que aumentou de 4 ng/mL para o Composto 67 até 7 ng/mL para o Composto 91, até 40 ng/mL para o Composto 92. Avaliou-se a seletividade dos compostos testados utilizando a linha de células Raji negativas em antigénio que eram insensíveis a todos os Compostos contendo cAClO com valores de IC50 > 1000 ng/ml para os Compostos 67, 91 e 92. EXEMPLO 50
CITOTOXICIDADE DE COMPOSTOS SELECIONADOS EM MODELOS DE XENOTRANSPLANTE DE HD E ALCL
Avaliou-se a citotoxicidade de Compostos 67, 91 e 92 em modelos de xenotransplante subcutâneos de linfoma de células grandes anaplásicas de humano Karpas 299 e Doença de Hodgkin L540cy em ratinhos CB-17 SCID. Iniciaram-se as avaliações quando os volumes de tumor tinham em média 50-100 mm3. Grupos de ratinhos portadores de Karpas-299 foram injetados q4dx4 com Composto 92, Composto 91 ou Composto 67 quer com 0,25 mg/kg quer com 0,5 mg/kg. Nenhum dos animais tratados com 0,25 mg/kg teve uma regressão, ainda que existisse um atraso no crescimento do tumor em comparação com controlos não tratados para os animais tratados com Composto 91 e Composto 67. O tratamento de tumores Karpas com Composto 91 e Composto 67 com 0,5 mg/kg dados q4dx4 conseguiu 5/5 regressões completas e 4/5 regressões completas, respetivamente. Observou-se um atraso no crescimento de tumor em comparação com animais não tratados para o Composto 92 com 0,5 mg/kg dados q4dx4, mas não se obtiveram quaisquer regressões completas.
Testou-se também a eficácia num modelo de Karpas subcutâneo com compostos selecionados administrados como uma única dose. O Composto 91 e o Composto 67 foram injetados com doses simples de 0,25, 0,5 e 2,0 mg/kg. Para a dose de 0,25 mg/kg não se observou qualquer atividade antitumoral em qualquer dos grupos e o volume de tumor médio não se afastou do dos controlos não tratados. Foi demonstrado um atraso no crescimento de tumor por ambas as moléculas para 0,5 mg/kg, mas não se obtiveram quaisquer regressões completas. O tratamento dos ratinhos com Composto 91 e Composto 67 com 2 mg/kg conseguiu 100% de regressões completas em ambos os grupos.
Compararam-se também o Composto 91 e o Composto 67 em ratinhos portadores de tumores subcutâneos de HD humano L540cy tratados q4dx4 com Composto 91 e Composto 67 com 1 e 3 mg/kg. Para 1 mg/kg, os ratinhos tratados com Composto 91 e Composto 67 tiveram atrasos significativos no crescimento de tumor em comparação com os animais não tratados. Observaram-se regressões completas em ratinhos aos quais se administraram tanto o Composto 91 com o Composto 67 com 3 mg/kg.
Lisboa, 2015-12-14
Claims (9)
- REIVINDICAÇÕES 1. Composição farmacêutica adaptada para administração intravenosa a seres humanos compreendendo compostos de Fórmula Ia:ou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitável onde, L- é um anticorpo monoclonal que se liga imunoespecificamente ao antigénio CD30; -A- é uma unidade de Extensor; a é 1; cada -W- é independentemente uma unidade de Aminoácido; w é um número inteiro que varia de 2 a 12; -Y- é uma unidade de Espaçador autodestrutivo; y é 1 ou 2; p varia de 1 a cerca de 20 e é o número médio de unidades —Aa—W„—Yy—D por anticorpo na composição; e -D é uma unidade de Fármaco em que os compostos de Fórmula Ia têm a estruturaou um seu sal ou solvato farmaceuticamente aceitáveis.
- 2. Composição farmacêutica da reivindicação 1 onde o anticorpo é um anticorpo AC10 quimérico.
- 3. Composição farmacêutica da reivindicação 2 onde p varia de 1 a cerca de 5.
- 4. Composição farmacêutica da reivindicação 2 onde p varia de cerca de 3 a cerca de 5.
- 5. Composição farmacêutica de qualquer uma das reivindicações 1 a 4 onde a composição farmacêutica é um pós liofilizado seco.
- 6. Composição farmacêutica de qualquer uma das reivindicações 1 a 4 onde a composição farmacêutica está na forma de um liquido.
- 7. Composição farmacêutica de qualquer uma das reivindicações 1 a 6 para utilização no tratamento de cancro.
- 8. Composição farmacêutica da ou uma composição da reivindicação 7 que se destina a utilização no tratamento de um cancro hematológico.
- 9. Composição farmacêutica da reivindicação 8 onde o cancro hematológico é Linfoma de Hodgkin. Lisboa, 2015-12-14
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