JPH09503488A - 抗−血管形成性組成物およびその使用法 - Google Patents

抗−血管形成性組成物およびその使用法

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JPH09503488A
JPH09503488A JP7504823A JP50482395A JPH09503488A JP H09503488 A JPH09503488 A JP H09503488A JP 7504823 A JP7504823 A JP 7504823A JP 50482395 A JP50482395 A JP 50482395A JP H09503488 A JPH09503488 A JP H09503488A
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リンジー エス マーチャン
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アンジオジェネシス テクノロジーズ インコーポレイテッド
ザ ユニヴァーシティ オブ ブリティッシュ コロンビア
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Abstract

(57)【要約】 本発明は抗−血管形成ファクタとポリマー担体とを含む組成物を提供する。抗−血管形成ファクタの代表的例は、抗−浸潤ファクタ、レチノイン酸およびその誘導体、およびタキソールを包含する。本発明は、また血管の塞栓法並びに胆管、尿道、食道および気管／気管支障害を排除する方法をも提供する。

Description

【発明の詳細な説明】 抗−血管形成性組成物およびその使用法技術分野 本発明は、一般的に癌および他の血管形成−依存性疾患を治療するための組成 物および方法に関し、より詳しくは抗−血管形成ファクタおよびポリマー担体を 含む組成物、該組成物で被覆されているステント並びにこれらステントおよび組 成物の利用法に関するものである。発明の背景 癌は米国における第二の主な死因であり、全死亡率の1/5以上に及ぶ。簡単に 言えば、癌は細胞群の制御不可能な分裂によって特徴付けられ、該分裂は、最も 典型的には１種以上の腫瘍の形成に導く。一般的に、癌は過去におけるよりもよ り一層容易に診断されるが、初期に検出されたとしても、多くの種類は依然とし て治癒不能である。 例えば、種々の外科的処置を含めて、様々な方法が現時点において癌の治療に 利用されている。しかしながら、外科手術のみで治療した場合には、多くの患者 （特に、乳癌、脳癌、結腸癌および肝臓癌等の幾つかの型の癌に冒された患者） は、該癌の再発を経験するであろう。外科手術に加えて、多くの癌は、また細胞 毒性をもつ化学療法剤（例えば、ビンクリスチン、ビンブラスチン、シスプラチ ン、メトトレキセート、5-FU等）および／または放射線療法を含む治療法との組 み合わせで治療される。しかしながら、この方法の難点の一つは、放射線療法お よび化学療法剤が正常な細胞に対しても有害であり、しばしば生命に危機を及ぼ す副作用を生ずる。更に、これらの方法は、しばしば極端に高い不治／寛解率を 有する。 外科手術、化学および放射線療法に加えて、他の研究者は癌細胞を排除するた めに、各個体自体の免疫を利用することを試みた。例えば、幾人かの研究者はア ジュバントとして細菌またはウイルス由来の成分を使用して、該免疫系を刺激し て、腫瘍細胞を破壊することを示唆している（一般的には、Principles of Cans er Biotherapy，Oldham(ed.)，Raven Press，N.Y.，1987を参照のこと）。この ような薬物は、一般的に動物腫瘍モデルにおけるアジュバントとしておよび非特 異的刺激剤として有用であったが、ヒトにおいて一般的に有効なものであること は未だ立証されていない。 リンホカインも癌の治療に利用されている。簡単にいえば、リンホカインは種 々の細胞によって分泌され、また一般的に免疫応答の発生において、特定の細胞 に対するある効果をもつ。リンホカインの例はインターロイキン(IL)-1、-2、-3 および-4並びにコロニー刺激ファクタ、例えばG-CSF、GM-CSFおよびM-CSFを包含 する。近年、或る研究グループは、末梢血細胞を刺激するのにIL-2を使用し、腫 瘍細胞に対して細胞毒性をもつ大量の細胞を増殖並びに生成した(Rosenberg等， N．Engl．J．Med.，1985，313:1485-1492)。 他の研究者は癌の治療における抗体の使用を示唆した。簡単に言えば、抗体は 正常な細胞に比して、癌細胞に対して固有のあるいはより支配的な幾つかの細胞 表面抗原を識別して発現し得る。これらの抗体または「マジックビュレット(magi c bullets)」は単独であるいは毒素と組み合わせて使用して、特異的に腫瘍細胞 を攻撃しかつ殺すことができる(Dillman，“Antibody Therapy”，Principles o f Cancer Biotherapy，Oldham(ed.)，Raven Press Ltd.，N.Y.，1987)。しかし ながら、殆どのモノクローナル抗体は二十日ネズミ由来のものであり、従って二 十日ネズミ抗体に対する過敏性が、特に反復的治療後には、その有効性を制限す るという一つの難点がある。共通の副作用は、発熱、発汗および悪寒、皮膚発疹 、関節炎および神経麻痺を含む。 これら方法のもう一つの付随的な難点は、局所的再発および局所的疾患の抑制 が、悪性疾患の治療における主な難題として残されていることである。特に、発 表の時点で、年間の全体として630,000名の患者（米国において）が局所的疾患 をもち（遠位転移の拡がりに関する確証はない）、このことはこれら全患者の64 %が悪性疾患であると診断されたことを示している（これは転移しない非メラノ ーマ性の皮膚癌を含まない）。これら患者の大多数について、該疾患の外科切除 は、最大の治癒の可能性を示し、事実428,000名が初期治療後に治癒するであろ う。428,000。不幸にして、202,000(あるいは局所的疾患をもつ全患者の32%)は 初期治療後に再発するであろう。これらの再発患者の中で、該疾患の局所的再発 による再発症例数は年間133,000(あるいは局所的疾患をもつ全患者の21%)名であ る。該疾患の遠位転移による再発症例数は68,000名(あるいは局所的疾患をもつ 全患者の11%)である。年間のその他の102,139名の患者は、該疾患の局所的成長 の抑制が不可能であった直接的な結果として死亡している。 この問題は乳癌においてより一層明白であり、乳癌は米国において年間186,00 0名の婦人を冒し、その死亡率は50年間に渡り不変である。乳房根治切除術、改 良乳房根治切除術または局所部分切除術による該疾患の外科的切除は、この状態 の治療の主力となっている。不幸なことに、局所部分切除術のみによって治療さ れたものの39%は該疾患の局所的再発を生じ、しかも驚くべきことに、その25%に おいて、該切除縁部が組織学的に腫瘍に冒されていることが明らかである。これ ら局所的再発の90%もが以前に切除した部位の２cm以内の部分で再発しているで あろう。 同様に、1991年には、北部アメリカだけで、113,000名を越える死者および238 ,600名の肝臓転移の新規な症例が報告されている。肝臓に転移した患者の平均生 存期間は、一旦肝臓に病巣が生じると、僅かに6.6カ月に過ぎない。肝臓転移に 対する非−外科的治療は、全身的な化学療法、放射線療法、化学的塞栓形成(che moembolization)、肝動脈化学療法および動脈内放射線療法を包含する。しかし ながら、かかる治療が一時的に該肝臓病巣のサイズを減じ得る（例えば、全身的 な化学療法および肝動脈化学療法は、初期にそれぞれ患者の病巣を15-20%および 80%減ずる）という証拠があるにも拘らず、該病巣は常に再生した。肝臓転移部 の外科的切除が唯一の治癒の可能性を示すが、かかる処置は転移をもつ患者の僅 かに5%において、かつ最初に肝臓癌に罹った患者の僅かに15-20%において可能で あるに過ぎない。 限られた成功率をもつ、腫瘍の治療のために試みられた方法の一つは、治療的 塞栓形成法である。この方法では、簡単に言えば、腫瘍を増進する血管が、該血 管に塞栓形成物質を注入することにより意図的に遮断される。この点に関連して 、オートロガス物質、例えば脂肪、血液凝固物、および細断した筋肉フラグメン ト 並びに人工的物質、例えばウール、綿、スチールボール、プラスチックまたはガ ラスビーズ、タンタル粉末、シリコーン化合物、放射性粒子、滅菌した吸収性ゼ ラチンスポンジ（ステリスポン(Sterispon)、ジェルフォーム）、酸化セルロー ス（オキシセル(Oxycel)）、スチールコイル、アルコール、凍結乾燥したヒト硬 膜(ライオデュラ(Lyodura))、微細繊維コラーゲン(アビテン(Avitene))、コラー ゲンフィブリル（タコトップ(Tachotop)）、ポリビニルアルコールスポンジ(PVA ；イバロン(Ivalon))、バリウム−含浸珪素球（ビス(Biss)）および取り外し可 能な気球等を包含する種々の物質が試みられた。肝臓転移部のサイズは、かかる 方法の利用により一時的に減少するが、腫瘍は典型的には、新たな血管内での腫 瘍の成長を生ずることにより応答する。 腫瘍形成に関連する問題は、体液通路、例えば胆管、気管、食道、脈管系およ び尿道を介する物質の流動を阻害する癌性の閉塞を生ずることである。腫瘍また は他の物質により閉塞された通路を解放状態に維持するために、ある装置、即ち ステントが開発されている。一般的なステントの代表例はウォールステント(Wal lstent)、ストレッカーステント(Strecker stent)、ジャイアンツルコステント( Gianturco stent)およびパルマツステント(Palmaz stent)を包含する。しかしな がら、ステントに係わる主な問題は、該ステントの間隙を通しての腫瘍または炎 症性物質の内部成長を、該ステントは阻止しないことにある。この物質がステン トの内部に達し、かつ該ステント内腔を汚した場合、該ステントが挿入されてい る該体液通路を閉塞する恐れがある。更に、体内でのステントの存在は、反応性 または炎症性の組織（例えば、血管、繊維芽細胞、白血球）の、該ステント内腔 への侵入を誘発し、結果として該ステントの部分的または完全な閉塞をもたらす 可能性がある。 本発明は、上で論じた処置に関連する諸問題を解決し、更に他の関連する利点 を与える、癌および他の血管形成−依存性疾患を治療するのに適した組成物およ び方法を提供する。発明の概要 簡単に言えば、本発明は抗−血管（または脈管）形成組成物、並びに該組成物 を癌および他の血管形成−依存性疾患の治療に利用する方法および装置を提供す る。本発明の一局面においては、組成物（以下「抗−血管形成組成物」と呼ぶ） が提供され、該組成物は(a)抗−血管形成ファクタおよび(b)ポリマー担体を含む 。本発明の範囲内において、この抗−血管形成ファクタとしては、例えば抗−浸 潤ファクタ(Anti-Invasive Factor)、レチノイン酸およびその誘導体、タキソー ル、タキソール類似体およびタキソール誘導体、並びにスラミン(Suramin)、TIM P-1（メタロプロテイナーゼ-1の組織阻害剤(Tissu Inhibitor of Metalloprotei nase-1)）、TIMP-2、プラスミノーゲンアクチベータインヒビター-1およびプラ スミノーゲンアクチベータインヒビター-2からなる群の構成員等を包含する広範 囲の分子が利用可能である。同様に、広範囲のポリマー担体が利用でき、その代 表的な例は40%の酢酸ビニルで架橋したポリ（エチレン−酢酸ビニル）、ポリ（ 乳酸−コ−グリコール酸）、ポリカプロラクトン、ポリ乳酸、40%の酢酸ビニル で架橋したポリ（エチレン−酢酸ビニル）とポリ乳酸とのコポリマーおよびポリ 乳酸とポリカプロラクトンとのコポリマーを包含する。本発明の一態様において は、該組成物は15〜200μｍの平均粒径を有する。 本発明のもう一つの局面においては、血管の塞栓形成法が提供され、該方法は 該血管に、治療上有効な量の（上記の）抗−血管形成組成物を放出して、該血管 を効果的に閉塞する工程を含む。その一態様においては、該抗−血管形成性組成 物は腫瘍を増進する血管に放出される。 更に別の本発明の局面においては、ステントが提供され、該ステントは一般的 に管状構造を含み、その表面は１種以上の抗−血管形成性組成物で被覆されてい る。本発明の他の局面においては、体液通路の内腔を拡張する方法が提供され、 該方法はステントを該通路に挿入する工程を含み、ここで該ステントは一般的に 管状構造を含み、該構造の表面は上記の如き抗−血管形成性組成物で被覆されて おり、かくして該通路は拡張される。本発明の種々の態様においては、胆管ステ ントを胆汁通路に挿入する工程を含む、胆管障害を排除する方法、尿道ステント を尿道に挿入する工程を含む、尿道障害を排除する方法、食道ステントを食道に 挿入する工程を含む、食道障害を排除する方法、および気管／気管支ステントを 気管または気管支に挿入する工程を含む、気管／気管支障害を排除する方法を提 供する。これら態様の各々において、該ステントは一般的に管状の構造をもち、 その表面は上記の如き抗−血管形成性組成物で被覆されている。 本発明の他の局面においては、腫瘍切除部位の治療法を提供し、該方法は腫瘍 の切除に引き続き、該部位における局所的癌の再発および新たな血管の形成を阻 害するように、該腫瘍切除縁部に上記の抗−血管形成性組成物を投与することを 含む。更に他の本発明の局面においては、角膜新血管形成を治療する方法を提供 し、該方法は、血管形成を阻害するように、該角膜に上記の如き抗−血管形成性 組成物を有効量で投与することを含む。一態様においては、該抗−血管形成性組 成物は、更に局所性のコルチコステロイドをも含有する。 本発明の他の局面においては、非−腫瘍性の血管形成依存性の疾患に罹った患 者における血管形成を阻害する方法を提供し、該方法は、新たな血管の形成を阻 害するように、非−腫瘍性の血管形成依存性の疾患に罹った患者に、タキソール を含有する組成物を、治療上有効な量で投与することを含む。他の局面において 、非−腫瘍性の血管形成依存性の疾患における、血管を閉塞する方法を提供し、 該方法は、該血管が効果的に閉塞されるように、タキソールを含有する組成物の 治療上有効な量を、該血管に放出することを含む。 更に他の本発明の局面においては、体液通路の内腔を拡張する方法を提供し、 該方法は、該通路が拡張するように、ステントを該通路内に挿入する工程を含み 、該ステントは一般的に管状構造を有し、該構造の表面はタキソールを含有する 組成物で被覆されている。本発明の種々の態様においては、胆管ステントを胆汁 通路に挿入する工程を含む、胆管障害を排除する方法、尿道ステントを尿道に挿 入する工程を含む、尿道障害を排除する方法、食道ステントを食道に挿入する工 程を含む、食道障害を排除する方法、および気管／気管支ステントを気管または 気管支に挿入する工程を含む、気管／気管支障害を排除する方法を提供する。こ れら態様の各々において、該ステントは一般的に管状の構造をもち、該構造の表 面はタキソール含有組成物で被覆されている。 本発明の他の局面においては、腫瘍切除部位の治療法を提供し、該方法は腫瘍 の切除に引き続き、該部位における局所的癌の再発および新たな血管の形成を阻 害するように、該腫瘍切除縁部にタキソール含有組成物を投与することを含む。 更に他の本発明の局面においては、角膜新血管形成を治療する方法を提供し、該 方法は、新たな血管形成を阻害するように、該角膜にタキソール含有組成物を治 療上有効な量で投与することを含む。 更に別の本発明の局面においては、医薬製品が提供され、該製品は(a)容器内 のタキソールと、(b)薬物の製造、使用または販売を規制する行政機関によって 指定された方式での、該容器に付帯する注意書とを含み、該注意書は非−腫瘍形 成性の血管形成−依存性疾患の治療のための、ヒトまたは獣医学的投与に関する 、該タキソールの該機関による承認を反映する。簡単に説明すれば、フェデラル ロー(Federal Law)は、ヒトの治療における薬剤の使用が、フェデラルガバメン トの機関により承認されることを要求する。（米国における）その施行責任はフ ード＆ドラッグアドミニストレーション(Food and Drug Administration)にあり 、そこでは21 U.S.C．§§301-392に詳述されている、かかる承認を保証するた めの適当な規則を発行している。動物組織から作られた製品を含む生物物質に対 する規制も、42 U.S.C．§262の下で与えられている。同様な承認は多くの国々 によっても必要とされている（規制は国毎に異なる可能性があるが）。 本発明のこれらのおよび他の局面は、以下の詳細な説明および添付図面を参照 することにより明らかとなろう。更に、幾つかの処置または組成物をより詳細に 説明している様々な参考文献を以下に示し、その全体を本発明の参考とする。図面の簡単な説明 第1A図は、６日目の殻のない卵の培養物を示す写真である。第1B図は、生きた 未染色の毛細管の、立体顕微鏡によって撮影した、ディジタル化コンピュータ− 表示した像である(1040x)。第1C図は、大きな下部の血管により供給されたCAM微 小脈管を示す侵食キャスティング(corrosion casting)(矢印；1300x)である。第 1D図は、該CAMを貫通して横方向に切断され、かつ光学顕微鏡レベルで記録され た、厚み0.5mmのプラスチック部分を図示したものである。この写真は該CAMの組 成を示しており、外部二重層外胚葉(Ec)、毛細管（矢印）および散乱する外膜を 含む中胚葉(M)、および単層の内胚葉(En)(400x)を含む。第1E図は、電子顕微鏡 レベル(3500x)の写真であり、そこには典型的な毛細管構造が示され、薄い 壁の内皮細胞（矢印先端）および関連する周皮細胞を示している。 第2A、2B、2Cおよび2D図は、タキソールに48時間暴露した後に撮影した４種の 異なる未染色のCAMの、一連のディジタル化した像を示す。 第3A、3Bおよび3C図は、該無血管領域における異なる３つの位置で、タキソー ル処理したCAMを貫通して横方向に切断した、厚み0.5mmのプラスチック部分の一 連の写真である。 第4A、4Bおよび4C図は、それぞれ上記の第3A、3Bおよび3C図に示したものと同 様な位置から撮影した一連の電子顕微鏡写真である。 第５図は、数によって示された微小球の粒径分布(5%PVA中の10mgナトリウムス ラミンを含有する５%ELVAX)を示す棒グラフである。 第６図は、重量で示された微小球の粒径分布(5%PVA中の10mgナトリウムスラミ ンを含有する5%ELVAX)を示す棒グラフである。 第７図は、１mlの5%ELVAX中に封入したナトリウムスラミンの重量を示す線グ ラフである。 第８図は、ELVAX中に封入したナトリウムスラミンの百分率を示す線グラフで ある。 第９図は、10%のNaClを含有する5%PVA中で作成した、10mgのナトリウムスラミ ンを含有する5%ELVAX微小球の粒径分布を示す棒グラフである。 第１０図は、10%のNaClを含む5%PVA中で作成した、10mgのナトリウムスラミン を含有する5%PLL微小球の、重量で表した粒径分布を示す棒グラフである。 第１１図は、10%のNaClを含有する5%PVA中で作成した、10mgのナトリウムスラ ミンを含有する5%PLL微小球の、数で表した粒径分布を表示した棒グラフである 。 第１２図はナトリウムスラミン放出の経時変化を描写した線グラフである。 第１３図は、肝臓腫瘍塞栓形成の代表的態様を例示した図である。 第１４図は、本発明の抗−血管形成性組成物で被覆した代表的なステントの挿 入を説明する図である。 第15A図は、中心体凝集に及ぼすEVA:PLAポリマーブレンド比の作用を示すグラ フである。第15Ｂ図は、「小さな」微小球のサイズを示す走査型電子顕微鏡写 真である。第15Ｃ図は、「大きな」微小球のサイズを示す走査型電子顕微鏡写真 である。第15Ｄ図は、0.6%w/vの50:50EVA:PLAポリマーブレンド微小球からのリ ン酸緩衝塩水(pH7.4)内への37℃におけるインビトロタキソール放出の経時変化 を描写した図である。白丸は「小さな」微小球、黒丸は「大きな」微小球を表す 。第15Ｅ図は、微小球(“MS”)によるタキソール放出の結果を示すCAMの写真で ある。第15Ｆ図は、高倍率における、第15Ｅ図と同様な写真である。 第１６図は、37℃における、リン酸緩衝塩水中への、1%、2%、5%または10%の タキソールを含有するポリカプロラクトン微小球からの放出率プロフィールを示 すグラフである。第16Ｂ図は、コントロール微小球で処理したCAMを示す写真で ある。第16Ｃ図は、5%のタキソールを担持した微小球で処理したCAMを示す写真 である。 第17Ａおよび17Ｂ図は、それぞれEVAフィルムからのタキソールの放出および 時間の経過に伴うこれら同一の膜中に残されるタキソールの割合を示す２つのグ ラフである。第17Ｃ図は、タキソールを含まないEVA/F127フィルムの時間の経過 に伴う膨潤を示す図である。第17Ｄ図は、タキソールを含まないEVA/Span 80フ ィルムの時間の経過に伴う膨潤を示す図である。第17Ｅ図は、種々のEVA/F127ブ レンドに関する応力対歪曲線を描写したグラフである。 第18Ａおよび18Ｂ図は、処方中における%MePEGの関数としての、PCL/MePEGポ リマーブレンドの融点（18Ａ）および該処方中におけるMePEGの量の関数として の、PCLペーストが60℃において固化し始めるのに必要とされる、時間で表した 増加の割合（18Ｂ）を示す２つのグラフである。第18Ｃ図は、種々のPCL/MePEG ポリマーブレンドの脆弱性を描写したグラフである。第18Ｄ図は、種々のMePEG 濃度をもつポリマーブレンドに関する、時間の経過に伴う重量変化の割合を示す クラブである。第18Ｅ図は、1%のタキソールを担持させた種々のポリマーブレン ドからの、経時のタキソール放出率を示すグラフである。第18Ｆおよび18Ｇ図は 、種々の量のタキソールの、20%MePEG/PCLブレンドから放出された全タキソール 量に及ぼす効果を示すクラブである。第18Ｈ図は、MePEG/PCLポリマーの引張強 さに及ぼすMePEGの効果を示すグラフである。 第19Ａ図は、CAM上のコントロール（未担持の）サーモペースト(thermopast e）を示す写真である。第19Ｂ図は、CAM上の20%タキソール担持サーモペースト を示す写真である。 第20Ａおよび20Ｂ図は、コントロール（未担持の）サーモペーストで処理した 腫瘍を有するCAMの二つの写真である。第20Ｃおよび20Ｄ図は、タキソール担持 サーモペーストで処理した腫瘍を有するCAMの二つの写真である。 第21Ａ図は、腫瘍の成長に及ぼすタキソール/PCLの効果を示すグラフである。 第21Ｂおよび21Ｃ図は、腫瘍の成長に及ぼす、コントロール、10%および20%タキ ソール担持サーモペーストの効果を示す二つの写真である。 第22Ａ図は、PBSを注入した関節由来の滑膜の写真である。第22Ｂ図は、微小 球を注入した関節由来の滑膜の写真である。第22Ｃ図は、PBSを注入した関節由 来の軟骨の写真であり、また第22Ｄ図は、微小球を注入した関節由来の軟骨の写 真である。発明の詳細な説明 上記の如く、本発明は抗−血管形成ファクタを利用する方法および組成物を提 供する。簡単に言えば、本発明の範囲内において、抗−血管形成ファクタは、血 管の成長を阻害するように作用する蛋白質、ペブチド、化学的または他の分子を 包含するものと理解すべきである。所定のファクタの該抗−血管形成活性を測定 するのに、例えばヒヨコ漿尿膜(“CAM”)アッセイを包含する種々の方法を容易 に利用することができる。簡単に言えば、以下の実施例2Aおよび2Cにおいてより 詳細に説明するように、新たに受精した鶏卵から殻の一部を除去し、テストすべ き該抗−血管形成ファクタのサンプルを含むメチルセルロースディスクを該膜上 に配置する。数日（例えば、48時間）後に、該テストすべきサンプルによる血管 成長の阻害を、該メチルセルロースディスクを包囲する領域における該ヒヨコ漿 尿膜の可視化によって容易に測定することができる。血管成長の阻害は、また例 えばコントロールメチルセルロースディスクとの比較で、該メチルセルロースデ ィスクを包囲する血管の数およびサイズを決定することにより、定量的に測定す ることも可能である。本発明において使用するのに適した、特に好ましい抗−血 管形成ファクタは、上記アッセイにおいて新たな血管の形成を完全に阻害する。 インビボでの抗−血管形成ファクタの有効性を決定するのに種々のアッセイが 使用でき、例えばこの目的のために開発したマウスモデルを包含する（Robertso n等，Cancer．Res.，1991，51:1339-1344を参照のこと）。更に、ここに記載す る本発明の種々の局面に関連する種々の代表的なインビボアッセイを、以下の実 施例５〜７および17〜19により詳細に記載する。 上記の如く、本発明は抗−血管形成ファクタと、ポリマー担体とを含む組成物 を提供する。簡単に言えば、広範囲の抗−血管形成ファクタが本発明の範囲内で 容易に利用できる。その代表的な例は、抗−浸潤ファクタ(Anti-Invasive Facto r)、レチノイン酸およびその誘導体、タキソール；およびスラミン、TIMP-1、TI MP-2、プラスミノーゲンアクチベータインヒビタ-1(Plasminogen Activator Inh ibitor-1）およびプラスミノーゲンアクチベータインヒビタ-2からなる群の構成 員を包含する。これらのおよび他の抗−血管形成ファクタは、以下においてより 詳細に記載されるであろう。 簡単に言えば、軟骨の抽出物から調製される抗−浸潤ファクタ即ち“AIF”は 、新たな血管の成長を阻害する原因となる成分を含むことが知られている。これ らの成分は７種の低分子量(<50,000ダルトン)タンパク質群を含有し(Kuettner & Pauli，「軟骨ファクタによる新血管形成の阻害(Inhibition of neovasculariz ation by a cartilage factor)」、血管系の発生(Development of the Vascular System)，Pitman Books(シバファウンデーションシンポジウム(Ciba Foundatio n Symposium)100)，pp．163-173，1983)、該成分は種々のプロテアーゼに対する 阻害効果を有する種々のタンパク質を含有する(Eisentein等，Am．J．Pathol.， 1975，81:337-346; Langer等，Science，1976，193:70-72; およびHorton等，Sc ience，1978，199:1342-1345)。本発明において使用するのに適したAIFは当分野 で公知の技術（例えば、Eisentein等の上記文献、Kuettner & Pauliの上記文献 およびLanger等の上記文献）を利用して容易に調製できる。AIFの精製した成分 、例えば軟骨-由来の阻害剤(“CDI”)(Moses等，Science，1990，248:1408-1410 を参照のこと)も、容易に調製でき、かつ本発明において使用できる。 レチノイン酸は細胞外マトリックス成分の代謝を変更して、血管形成の阻害を 生ずる。プロリン、アンギオスタチン系ステロイドまたはヘパリンの添加を、ト ランスレチノイン酸の該抗−血管形成効果を相乗的に高めるために利用すること ができる。レチノイン酸並びに本発明において使用することのできるその誘導体 は、例えばシグマケミカル社(Sigma Chemical Co.)(#R2625)を包含する販売元か ら容易に得ることができる。 タキソールはタクスズブレビフォリア(Taxus brevifolia)(パシフィックユー( Pacific Yew))の樹皮およびパシフィックユー(Pacific Yew)のタキソマイセスア ンドレアナエ(Taxomyces Andreanae)およびエンドフィチックフンガス(Endophyt ic Fungus)から得られる(Stierle等，Science，1993，60:214-216)高度に誘導さ れたジテルペノイドである。一般的に、タキソールはチューブリン(tubulin)に 結合することにより微小管状構造を安定化し、異常な有糸分裂性紡錘体を形成す るように作用する。「タキソール」（ここではタキソールの類似体および誘導体 、例えばバッカチン(Baccatin)およびタキソテール(taxotere)をも包含するもの と理解すべきである）は、当分野で公知の技術を利用して容易に調製できる（WO 94/07882、WO 94/07881、WO 94/07880、WO 94/07876、WO 93/23555、WO 93/100 76、米国特許第5,294,637号、同第5,283,253号、同第5,279,949号、同第5,274,1 37号、同第5,202,448号、同第5,200,534号、同第5,229,526号およびEP 590,267 号をも参照のこと）か、あるいは例えばシグマケミカル社(Sigma Chemical Co.) 、セントルイス、ミズーリー（タクスズブレビフォリア由来のT7402)を包含する 種々の製造元から得ることもできる。スラミンは典型的には殺トリパノソーマ剤 として使用されているポリスルホン化ナフチルウレア化合物である。簡単に言え ば、スラミンは種々の成長因子、例えば血小板由来の成長因子(“PDGF”)、表皮 性の成長因子(“EGF”)、転換成長因子(“TGF-β”)、インシュリン−様成長因 子(“IGF-1”)および繊維芽細胞成長因子(“βFGF”)等の特異的細胞表面結合を 阻害する。スラミンは公知の方法に従って調製できるか、あるいは例えばモーバ イケミカル社(Mobay Chemical Co.,)，N.Y．を包含する種々の製造元から容易に 得ることができる（Gagliardi等，Cancer Res.，1992，52:5073-5075; Coffey， Jr.等，J．of Cell．Phys.，1987，132:143-148を参照のこと）。 メタロプロテイナーゼ-1の組織阻害剤(TIMP)は、MTPアーゼをも分泌する内皮 細胞によって分泌される。TIMPはグリコシル化されており、28.5 KdAなる分子量 を有する。TIMP-1は活性化されたメタロプロテイナーゼに結合することにより血 管形成を調節し、それにより血管の細胞外マトリックスへの侵入を抑制する。メ タロプロテイナーゼ-2の組織阻害剤(TIMP-2)も、血管形成を阻害するのに使用で きる。簡単に説明すると、TIMP-2は21 kDaの非グリコシル化タンパク質であって 、活性なおよび潜在的なプロ酵素型両者におけるメタロプロテイナーゼに結合す る。TIMP-1およびTIMP-2両者はシネルゲン(Synergen)、ブルダー、コロラド等の 販売元から入手できる。 プラスミノーゲンアクチベータインヒビタ-1(PA)は50 kDaの糖タンパク質であ り、これは血小板中に存在し、また内皮細胞および筋肉細胞によっても合成し得 る。PAI-1はt-PAおよび内皮のバソラテラル(basolateral)サイトにおけるウロキ ナーゼプラスミノーゲンアクチベータを阻害し、かつ付随的にフィブリン溶解過 程を調節する。プラスミノーゲンアクチベータインヒビタ-2(PAI-2)は、一般的 に妊娠中および腫瘍が存在する等の幾つかの状況下でのみ血液中に見出される。 簡単に説明すれば、PAI-2は56 kDaのタンパク質であって、単核細胞およびマク ロファージによって分泌される。これはフィブリン溶解活性を調節するものと考 えられ、かつ特にウロキナーゼプラスミノーゲンアクチベータおよび組織プラス ミノーゲンアクチベータを阻害し、それによりフィブリン溶解を阻害する。 他の広範な抗−血管形成ファクタも、本発明において使用できる。その代表的 な例は、血小板因子４（シグマケミカル社、#F1385）、プロタミンサルフェート (Protamine Sulphate)(クルペイン(Clupeine))(シグマケミカル社、#P4505)、硫 酸化キチン誘導体(クイーンクラブシェル(queen crab shells)から調製)(シグマ ケミカル社、#C3641; Murata等，Cancer Res.，1991，51:22-26)、硫酸化ポリサ ッカライドペプチドグリカン錯体(SP-PG)(この化合物の機能は、ステロイド、例 えばエストロゲンおよびタモキシフェンシトレートの存在により高めることがで きる)、スタウロスポリン(Staurosporine)(シグマケミカル社、#S4400)、例えば プロリン類似体を包含するマトリックス代謝の調節剤(Modulators of Matrix Me tabolism)(L-アゼチジン-2-カルボン酸(LACA)（シグマケミカル社、#A0760）、 シスヒドロキシプロリン、d,L-3,4-デヒドロプロリン（シグマケミカル社、#D02 65）、チアプロリン(シグマケミカル社、#T0631))、α，α-ジピリジル （シグマケミカル社、#D7505）、β−アミノプロピオニトリルフマレート(シグ マケミカル社、#A3134))、MDL 27032(4-プロピル-5-(4-ピリジニル)-2(3H)-オキ サゾロン、メリオンメレルダウリサーチインスティチュート(Merion Merrel Dow Research Institute))、メトトレキセート（シグマケミカル社、#A6770; Hirat a等，Arthritis and Rheumatism，1989，32:1065-1073）、ミトキサントロン(Mi toxantrone)(Polverini and Novok，Biochem．Biophys．Res．Comm.，140:901-9 07)、ヘパリン（Folkman，Bio．Phar.，1985，34:905-909;シグマケミカル社、# P8754）、インターフェロン（例えば、シグマケミカル社、#13265）、２マクロ グロブリン−血清（シグマケミカル社、#M7151）、ChIMP-3(Pavloff等，J．Bio. Chem．1992，267:17321-17326)、キモスタチン（シグマケミカル社、#C7268; To mkinson等，Biochem．J.，1992，286:475-480）、β−シクロデキストリンテト ラデカサルフェート（シグマケミカル社、#C4767）、エポネマイシン、エストラ マスチン(シグマケミカル社から入手可能、Wang & Stearns，Cancer Res.，1988 ，48:6262-6271)、フマギリン(シグマケミカル社、#F6771; カナダ特許第2,024, 306号、Ingber等，Nature，1990，348:555-557)、金ナトリウムチオマレート(“ GST”; シグマ社、G4022; Matsubara & Ziff，J．Clin．Invest.，1987，79:144 0-1446)、D-ペニシラミン(“CDPT”;シグマケミカル社、#P4875またはP5000(HCl ))、β-1-アンチコラーゲナーゼ−血清、α2-アンチプラスミン（シグマケミカ ル社、A0914; Holmes等，J．Biol．Chem.，1987，262(4):1659-1664）、ビスア ントレン（ナショナルキャンサーインスティチュート(National Cancer Institu te）、ロベンザリットジナトリウム(N-(2)-カルボキシフェニル-4-クロロアンス ロニル酸ジナトリウムまたは“CCA”; Takeuchi等，Agents Actions，1992，36: 312-316）、サリドマイド、アンギオスタティックステロイド、AGM-1470、カル ボキシアミノイミダゾール、メタロプロテイナーゼ阻害剤、例えばBB94およびペ プチドCDPGYIGSR-NH2(シーケンス(SEQUENCE)ID No．1)（イワキガラス、東京、 日本）を包含する。 本発明の抗−血管形成組成物は、該抗−血管形成ファクタおよびポリマー担体 に加えて、更に広範な化合物を含むことができる。例えば、本発明の抗−血管形 成組成物は、本発明の幾つかの態様においては、１種以上の抗生物質、抗−炎症 剤、抗−ウイルス剤、防黴剤および／または抗−原虫薬をも含むことができる。 本明細書に記載する組成物中に含まれる抗生物質の代表的な例は、ペニシリン、 セファロスポリン類、例えばセファドロキシル、セファゾリンおよびセファクロ ール、アミノグリコシド類、例えばゲンタマイシンおよびトブラマイシン、スル ホンアミド類、例えばスルファメトキサゾール、およびメトロニダゾールを包含 する。抗−炎症剤の代表的な例は、ステロイド類、例えばプレドニソン、プレド ニソロン、ヒドロコルチゾン、アドレノコルチコトロピックホルモンおよびスル ファサラジン、および非−ステロイド系抗−炎症薬(“NSAIDS”)、例えばアスピ リン、イブプロフェン、ナプロキセン、フェノポルフェン、インドメタシンおよ びフェニルブタゾンを含む。抗−ウイルス剤の代表的な例は、アシクロビル、ガ ンシクロビルおよびジドブジンを包含する。代表的な防黴剤の例はナイスタチン 、ケトコナゾール、グリセオフルビン、フルシトシン、ミコナゾールおよびクロ トリマゾールを含む。抗−原虫薬の代表的な例は、ペンタミジン、イセチオネー トキニン、クロロキンおよびメフロキンを含む。 本発明の抗−血管形成組成物は、また１種以上のホルモン、例えば甲状腺ホル モン、エストロゲン、プロゲステロン、コルチゾンおよび／または成長ホルモン 、他の生物学的に活性な分子、例えばインシュリン、並びにTH1（例えば、イン ターロイキン-2、-12および-15、γインターフェロンまたはTH2（例えば、イン ターロイキン-4および-10)サイトカイン類をも含むことができる。 本発明の抗−血管形成組成物は、また付随的な成分、例えは界面活性剤（親水 性または疎水性、実施例13を参照のこと）、抗−新生物剤または化学療法剤（例 えば、5-フルオロウラシル、ビンブラスチン、ドキシルビシン、アドリアマイシ ンまたはタモシフェン）、放射性薬物（例えば、Cu-64、Ga-67、Ga-68、Zr-89、 Ru-97、Tc-99m、Rh-105、Pd-109、In-111、I-123、I-125、I-131、Re-186、Re-1 88、Au-198、Au-199、Pb-203、At-211、Pb-212およびBi-212）あるいはトキシン （例えば、リシン、アブリン、ジフテリアトキシン、コレラトキシン、ゲロニン (gelonin)、ヨウシュヤマゴボウの抗−ウイルスタンパク、トリチン(tritin)、 シゲラトキシンおよびシュウドモナス外毒素Ａ）をも含有することができる。 上記のように、本発明の抗−血管形成組成物は、抗−血管形成ファクタおよび ポリマー担体を含む。上記の多数の抗−血管形成ファクタおよび上で論じた他の 化合物に加えて、本発明の抗−血管形成組成物は広範なポリマー担体、例えば生 分解性および非−生分解性組成物両者を含むことができる。生分解性組成物の代 表的な例は、アルブミン、ゼラチン、澱粉、セルロース、デストラン類(destran s)、多糖類、フィブリノーゲン、ポリ(d,1-ラクチド）、ポリ(d,1-ラクチド-コ ーグリコライド）、ポリ（グリコライド）、ポリ（ヒドロキシブチレート）、ポ リ（アルキルカーボネート）およびポリ（オルトエステル）（一般的には、Illu m，L.，Davids，S.S.(ed.)，“Polymers in controlled Drug Delivery”，Wrig ht，Bristol，1987; Arshady，J．Controlled Release，1991，17:1-22; Pitt， Int．J．Phar.，1990，59:173-196; Holland等，J．Controlled Release，1986 ，4:155-0180を参照のこと）。非−生分解性ポリマーの代表的な例は、EVAコポ リマー、シリコーンゴムおよびポリ（メチルメタクリレート）を含む。特に好ま しいポリマー担体はEVAコポリマー（例えば、ELVAX 40，40%の酢酸ビニルで架橋 したポリ（エチレン−酢酸ビニル）、デュポン(DuPont)社から入手可能）、ポリ （乳酸−コ−グリコール酸）、ポリカプロラクトン、ポリ乳酸、40%の酢酸ビニ ルで架橋したポリ（エチレン−酢酸ビニル）とポリ乳酸とのコポリマーおよびポ リ乳酸とポリカプロラクトンとのコポリマーを包含する。 ポリマー担体は種々の形状、例えばナノ球(nanosphere)または微小球、棒状、 ペレット、スラブまたはカプセル形状で使用できる（例えば、Goodell等，Am．J ．Hosp．Pharm.，1986，43:1454-1461; Langer等，“Controlled release of ma cromolecules from polymers”，Biomedical Polymers，Polymeric materials a nd pharmaceuticals for biomedical use，Goldberg，E.P.，Nakagim，A.(ed.) ，Academic Press，pp．113-137，1980; Rhine等，J．Pharm．Sci.，1980，69-2 65-270; Brown等，J．Pharm．Sci.，1983，72:1181-1185; Bawa等，J．Controll ed Release，1985，1:259-267を参照のこと）。 好ましくは、本発明の抗−血管形成組成物（これは１種以上の抗−血管形成フ ァクタおよびポリマー担体を含む）は、意図した用途に適した様式で作成するこ とができる。本発明の好ましい局面においては、該抗−血管形成組成物は生分解 性であるべきであり、また数週間乃至数カ月の機関に渡り１種以上の抗−血管形 成ファクタを放出すべきである。更に、本発明の抗−血管形成組成物は、好まし くは数カ月に渡り安定であり、かつ滅菌条件下で製造し、かつ保存できるもので あるべきである。 本発明の幾つかの局面においては、抗−血管形成組成物は、特定の用途に応じ て、ナノ球乃至微小球(例えば、0.1〜500μm)の範囲のサイズで作成できる。例 えば、（以下で論じるように）腫瘍塞栓の目的で使用する場合、15〜500μm、好 ましくは15〜200μm、最も好ましくは25〜150μmの範囲の微小球として該抗−血 管形成組成物を作成することが好ましい。このようなナノオーダーの粒子（ナノ 粒子）は「スプレー」として容易に適用でき、フィルムまたは被膜として固化で きる。ナノ粒子（「ナノ球」とも言う）は広範なサイズ、例えば0.1〜３μm、10 〜30μmおよび30〜100μm(実施例８参照)で調製できる。 抗−血管形成組成物は、また種々の他の用途（ここにその開示を与える）のた めに調製できる。例えば、角膜に該抗−血管形成組成物を投与するために、本発 明の組成物はナノ粒子としてのポリマー中に配合できる（一般的には、Kreuter ，J．Controlled Release，1991，16:169-176; Couvreur & Vauthier，J．Contr olled Release，1991，17:187-198を参照のこと）。このようなナノ粒子は、ま た「スプレー」として容易に適用でき、フィルムまたは被膜として固化できる。 ナノ粒子（「ナノ球」とも言う）は広範なサイズ、例えば0.1〜３μm、10〜30μ mおよび30〜100μm(実施例８参照)で調製できる。 本発明の抗−血管形成組成物は、また種々の「ペースト」またはゲル形状で調 製することも可能である。例えば、本発明の一態様においては、抗−血管形成組 成物は、ある温度（例えば、37℃を越える温度、例えば40℃、45℃、50℃、55℃ または60℃）にて液体であり、かつ他の温度（例えば、周囲温度、体温または37 ℃未満の温度）にて固体または半−固体状のものとして与えられる。このような 「サーモペースト」は、ここに与えられる開示によって容易に作成できる（例え ば、実施例10および14を参照のこと）。 本発明の更に他の局面においては、本発明の抗−血管形成組成物は、フィルム 形状で作成できる。好ましくは、このようなフィルムは、一般的に５、４、３、 ２または１mm未満、より好ましくは0.75または0.5mm未満、最も好ましくは500〜 100μm未満の厚みをもつ。かかるフィルムは好ましくは可撓性で良好な引張強さ （例えば、50を越える、好ましくは100を越える、およびより好ましくは150また は200N/cm2を越える）、および良好な接着性（即ち、湿ったまたは湿潤表面に容 易に接着する）を有し、かつ制御された透過性をもつ。かかるフィルムの代表的 な例は以下の実施例において示される（例えば、実施例13を参照）。 ポリマー担体等への抗−血管形成ファクタの配合の代表的な例は、以下で、実 施例３、４および８〜15において一層詳細に記載される。 動脈塞栓 上記組成物に加えて、本発明は種々の方法をも提供し、該方法は上記の抗−血 管形成組成物を使用する。特に、本発明の一局面においては、血管を閉塞する方 法を提供し、該方法は該血管が有効に閉塞されるように、（上記のような）抗− 血管形成組成物の治療上有効な量を、該血管に供給する工程を含む。血管を閉塞 するのに適当な治療上有効な量は、以下に与えられる開示および実施例６の記載 のようにして容易に決定できる。特に好ましい態様において、該抗−血管形成組 成物は、腫瘍を増進する血管に供給される（第13図参照）。 簡単に言えば、器官または領域に対する血液の供給を減じまたは停止すること が望ましい幾つかの臨床的状況（例えば、出血、腫瘍の発現等）がある。以下に より詳細に説明するように、これは本発明の抗−血管形成組成物を、選択的に配 置されたカテーテル（第13図参照）を介して、所定の血管内に注入することによ り達成できる。該組成物は、これが脈管内に嵌まり込んで、物理的にまたは化学 的に該血管を閉塞するまで、該血流を通して移動する。この選択された領域に対 して低減または停止された血流は梗塞（酸素および養分の供給不十分のための細 胞の死）または損傷を受けた血管からの血液損失の低減をもたらす。 塞栓療法で使用するために、本発明の抗−血管形成組成物は、好ましくは無毒 で、凝塊形成性であり、また血管カテーテルでの注入が容易であり、放射線不透 過性で、その作用において迅速かつ永続的であり、無菌であり、かつ該処置の時 点で種々の形状またはサイズで容易に入手できるものである。更に、該組成物は 、 好ましくは抗−血管形成ファクタの緩慢（理想的には、数週間乃至数カ月の機関 に渡り）な放出を与える。特に好ましくは、抗−血管形成組成物は該血管系に注 入された後に、15〜200μｍの予想可能なサイズをもつべきである。好ましくは 、溶液中でまたは一旦注入された後に、これらは大きな粒子に凝集すべきではな い。更に、好ましくは組成物は使用前の保存中に形状または物性の変化するもの であってはならない。 塞栓療法は、新生物の制御において役立つ少なくとも３つの主な方法で、即ち (1)腫瘍（通常は良性のもの）の完全な治療、(2)手術前の塞栓、および(3)一時 的な塞栓において利用できる。簡単に言えば、良性の腫瘍は、しばしば塞栓療法 のみで首尾よく治療できる。このような腫瘍の例は、脈管起源の単純な腫瘍（例 えば、血管腫）、内分泌腫、例えば甲状腺アデノーマおよび良性骨腫瘍を包含す る。 他の腫瘍（例えば、腎腺癌）に対しては、手術前の塞栓を外科的切除の数時間 または数日前に利用して、手術による血液の損失を減じ、該手術に要する時間を 短縮し、かつ該腫瘍の外科処置による生きた悪性細胞の散々化を可能性を減ずる ことができる。多くの腫瘍が手術前に首尾よく塞栓でき、このような腫瘍は、例 えば鼻咽頭腫瘍、頸静脈小体腫、髄膜腫、ヘモデクトーマおよび迷走神経腫を含 む。 塞栓療法は、また手術不能な悪性疾患の初期治療として利用でき、進行した疾 患に罹った患者の生存期間を延長できる。塞栓療法は、不快な症状、例えば出血 、静脈性障害および気管圧迫を緩和することにより、悪性腫瘍に罹った患者の生 存状態を大幅に改善することを可能とする。しかしながら、一時的な腫瘍塞栓の 最大の利点は、悪性の内分泌腺腫の体液性の作用を受けた患者にみられ、そこで はカルチノイド腫および他の内分泌腺新生物、例えばインスリノーマおよびグル カゴノーマからの転移は緩慢に成長し、かつこれらの生ずる内分泌腺症候群によ る重度の苦痛をも生ずる。 一般的に、本発明の抗−血管形成組成物を利用する塞栓療法は、典型的にはサ イトには無関係に、同様な方法で実施される。簡単に言えば、塞栓すべき領域の 血管造影法（血管のロードマップ）を、まずX-線撮影するために、動脈または静 脈（塞栓すべきサイトに依存して）内に挿入されたカテーテルを介して放射線不 透過性造影剤を注入することにより実施する。このカテーテルは皮下的にまたは 外科手術によって挿入できる。次いで、該カテーテルを介して本発明の抗−血管 形成組成物を、流動の停止が観測されるまで循環させることにより、血管を塞栓 する。この血管造影を繰り返すことによって閉塞を確認できる。 塞栓療法は、一般的に処置すべき腫瘍または脈管集団の間隙全体に渡る、抗− 血管形成ファクタを含有する組成物の分布をもたらす。動脈内腔を閉塞している 該塞栓粒子の物理的嵩は、血液供給の閉塞をもたらす。この効果に加えて、抗− 血管形成ファクタの存在は新たな血管の形成を阻止し、これにより該腫瘍または 脈管集団への供給を阻止して、血液供給の遮断による不活性化効果を高める。 従って、広範な腫瘍が本発明の組成物を使用して塞栓可能であることは明らか である。簡単に言えば、腫瘍は、典型的には２つの群、即ち良性および悪性に分 類できる。良性腫瘍においては、細胞はその分化特性を維持しており、かつ完全 に制御不能な様式では分裂しない。更に、この腫瘍は局在化され、かつ非−転移 性である。悪性腫瘍においては、細胞は分化不能となり、身体の成長およびホル モンシグナルに応答せず、かつ制御不能な様式で増殖し、この腫瘍は侵襲的で、 遠位のサイトまで広がる（転移）ことができる。 本発明の一態様においては、肝臓の転移（二次的腫瘍）を、塞栓療法を利用し て治療することを可能とする。簡単に言えば、カテーテルを大腿部または腕部動 脈を介して挿入し、透視検査法による誘導の下で、該動脈系を介して該カテーテ ルを導くことにより、肝動脈まで前進させる。このカテーテルを、腫瘍に養分供 給する血管の完全な閉塞を可能とするまで該肝動脈系に前進させ、一方でできる 限り多くの動脈枝を正常な構造に養分供給するために残しておく。理想的には、 これは肝動脈のセグメント血管枝であるが、胃十二指腸動脈の源から離れた全肝 動脈、あるいは複数の別々の動脈さえも、腫瘍の程度およびその個々の血液供給 に依存して、閉塞する必要があることもあり得る。一旦、所定のカテーテル位置 を達成したら、閉塞すべき動脈中の流動が停止するまで、あるいは好ましくは５ 分間の観測後に、該動脈カテーテルを通して（上記のような）抗−血管形成組成 物を注入することによって、該動脈を塞栓する。この動脈の閉塞は、該カテーテ ルを介して放射線不透過性造影剤を注入することにより確認でき、かつ透視検査 法またはX-線フィルムによって、前に造影剤で満たされていた該血管が最早満た されていないことを立証することにより確認できる。同様な手順を繰り返して、 閉塞すべき動脈に該組成物を供給することができる。 上記の如く、良性および悪性両腫瘍は本発明の抗−血管形成組成物を使用して 塞栓治療できる。良性肝腫の代表的な例は、肝細胞アデノーマ、空洞性血管腫、 および病巣小結節過形成を含む。より稀であり、臨床的な徴候をもたない他の良 性腫瘍を治療することも可能である。このような腫瘍の例は、胆管アデノーマ、 胆管のう腺腫、繊維腫、脂肪腫、平滑筋腫、中皮腫、奇形腫、粘液腫、および小 結節再生性過形成を含む。 悪性肝腫は、一般的に２つのカテゴリー、即ち一次および二次に分類される。 一次腫瘍は直接これらが発見された組織から生ずる。従って、一次肝腫は該肝臓 組織を構成する細胞（例えば、肝細胞および胆嚢細胞）由来のものである。動脈 塞栓によって治療できる一次肝臓悪性腫瘍の代表的な例は、肝細胞癌、胆管癌、 血管肉腫、のう腫癌、偏平細胞癌および肝芽腫を包含する。 二次腫瘍、即ち転移腫瘍は身体のいたる部分に生じるが、遠位の器官にも広が る腫瘍である。転移の共通の経路は、隣接構造内での直接的成長、脈管系または リンパ系を介しての拡がり、組織面および体腔（腹水、脳脊髄液等）に沿った移 動である。二次肝腫は癌患者の死亡の最も共通した原因の一つであり、最も共通 した肝腫の形態である。見掛け上は如何なる悪性疾患も肝臓に転移し得るが、最 も肝臓に広がり易い腫瘍は、胃、結腸、および膵臓癌、メラノーマ、肺、中咽頭 および膀胱腫、ホジキンおよび非−ホジキン型リンパ腫、乳房、卵巣および前立 腺腫瘍を包含する。上記の一次腫瘍各々は、動脈塞栓によって治療可能な多数の 腫瘍型を有する（例えば、卵巣癌には32を越える異なる型がある）。 上記の如く、本発明の抗−血管形成組成物を使用する塞栓療法は、また血管を 閉塞することが望ましい種々の他の臨床的状況にも適用できる。本発明の一局面 においては、動静脈の形成異常を、上記組成物の１種の投与により治療すること ができる。簡単に言えば、動静脈の形成異常（脈管形成異常）とは、動脈と静脈 との間の少なくとも１種の異常な連絡が生じた、一群の疾患を意味し、支配的に 血管を含む局所的な腫瘍−様集団を与える。このような疾患は先天性または後天 性であり得る。 本発明の一態様においては、動静脈の形成異常を大腿または腕動脈を介してカ テーテルを挿入し、供給源となる動脈内に透視検査法による誘導の下で該カテー テルを進行させることによって治療できる。このカテーテルを、脈管形成異常部 に養分供給する血管の完全な閉塞を可能とするまで必要な限り前進させ、一方で できる限り多くの動脈枝を正常な構造に養分供給するために残しておく（理想的 には、これは単一の動脈であるが、最も高頻度で、該脈管形成異常の程度および その個々の血液供給の程度に応じて、複数の別々の動脈を閉塞する必要があるこ ともあり得る）。一旦、所定のカテーテル位置を達成したら、本発明の抗−血管 形成組成物を使用して、各動脈を塞栓することができる。 本発明のもう一つの局面においては、過度の出血状態を処置するために塞栓を 行うことができる。例えば、月経過多（月経中の過度の出血）を、子宮動脈の塞 栓により容易に治療できる。簡単に言えば、該子宮動脈は内部腸骨動脈の双方向 の枝脈である。本発明の一態様によれば、大腿または腕動脈を介してカテーテル を挿入し、透視検査法による誘導の下で該動脈系を通して該カテーテルを誘導し て、各子宮動脈内に進行させることによって挿入できる。このカテーテルを、該 子宮に到る血管の完全な閉塞を可能とするまで必要な限り前進させ、一方ででき る限り多くの該子宮動脈から派生する動脈枝を、正常な構造に養分供給するため に残しておく。理想的には、各側の単一の子宮動脈を塞栓できるが、場合によっ ては、個々の血液供給に応じて、複数の別々の動脈を閉塞する必要があることも あり得る。一旦、所定のカテーテル位置を達成したら、上記の如き抗−血管形成 組成物の投与により、各動脈を塞栓することができる。 同様にして、例えば急性出血、脈管異常、中枢神経系疾患および脾機能亢進等 を包含する様々な他の状態においても、動脈塞栓を達成できる。ステント用被膜としての抗−血管形成組成物の利用 上記の如く、本発明はまたステントをも提供し、該ステントは一般的に管状構 造をもち（例えば、螺旋状の形状を含む）、その表面は上記のような組成物で被 覆されている。簡単に言えば、ステントは、通常円筒状の形状の足場であり、疾 患過程により狭窄した（例えば、腫瘍による内部成長）体液通路（例えば、胆管 ）内に挿入して、該通路の閉塞または再閉塞を防止することができる。ステント は、これらが挿入された体液通路の壁を物理的に解放状態に維持することにより 機能する。 本発明においては、種々のステントを使用することができ、例えば食道ステン ト、脈管ステント、胆管ステント、膵管ステント、尿管および尿道ステント、涙 腺ステント、ユースタキー管ステント、ファロピオ管ステントおよび気管／気管 支ステント等を包含する。 ステントは、販売元から容易に入手できるか、あるいは周知の技術により構築 できる。ステントの代表的な例は「膨脹性の管腔内移植片、および移植法並びに 装置および膨脹性管腔内移植片」と題する米国特許第4,776,337号、「内在性ス テント」と題する米国特許第5,176,626号、中空身体導管用のニチノール(Nitino l)ステント」と題する米国特許第5,147,370号、安定な軸長さをもつ自己−膨脹 性プロテーゼ」と題する米国特許第5,064,435号、「内在性ステントおよびその 利用法」と題する米国特許第5,052,998号、および脈管内ステントおよび放出系 」と題する米国特許第5,041,126号に記載のものを包含する。これら全てを本発 明の参考文献とする。 ステントは、種々の方法を使用して、本発明の抗−血管形成組成物または抗− 血管形成ファクタで被覆できる。該方法は、例えば(a)該ステントに直接抗−血 管形成組成物を固定（例えば、該ステントに噴霧して、ポリマー／薬物フィルム を固定するか、あるいは該ステントをポリマー／薬物溶液に浸漬することにより 固定）する方法、(b)後に抗−血管形成組成物（または上記の抗−血管形成ファ クタ）を吸収する、ヒドロゲル等の物質を該ステントに塗布する方法、(c)該ス テント構造に、抗−血管形成組成物を被覆した糸（または該ポリマー自体を糸に 形成したもの）を相互に織り込む方法、(d)該ステントを、抗−血管形成組成物 を含むあるいは該組成物で被覆したスリーブまたはメッシュ中に挿入する方法、 あるいは(e)該ステント自体を抗−血管形成組成物で構築する方法を包含する。 本発明の好ましい態様においては、該組成物はその保存中および挿入時点で、該 ステントにしっかりと接着しているべきであり、またその直径がその圧潰したサ イズから十分に膨脹したサイズにまで膨脹した場合に、該ステントから脱落すベ きではない。この抗−血管形成組成物は、また保存中に、挿入前に、あるいは身 体内での膨脹後に体温に加温された場合に、劣化しないことが好ましい。更に、 これは該ステントを滑らかにかつ平坦に被覆して、血管形成阻害剤の均一な分布 をもち、一方で該ステントの輪郭を変えないものであることが好ましい。本発明 の好ましい態様においては、該抗−血管形成組成物は、一旦配置されたら、該ス テントを包囲する組織内に該抗−血管形成ファクタを、均一で予測可能な長い放 出時間をもたらすべきである。脈管ステントについては、上記特性に加えて、該 組成物は該ステントを凝塊形成性（血餅の形成を生ずる）とせず、もしくは過度 の血流の乱れを（該ステント自体が、未被覆である場合に生ずるであろうと予想 される以上に）生じないものであるべきである。本発明のもう一つの局面では、 体液通路の内腔を拡張する方法を提供し、該方法はステントを該通路に挿入する 工程を含み、該ステントは一般的に管状の構造をもち、該構造の表面は、該通路 が拡張されるように、抗−血管形成組成物（または抗−血管形成ファクタのみ） で被覆されている。種々の態様が以下に記載され、そこでは体液通路の内腔を拡 張して、胆管、食道、気管／気管支、尿道または脈管障害が排除される。更に、 代表的な例を、以下の実施例７でより詳細に説明する。 一般的に、ステントは治療すべきサイトまたは疾患とは無関係に、類似の様式 で挿入される。簡単に言えば、通常は診断的な想像上の手順で、内視鏡検査、あ るいは外科手術の際の直接的可視化による挿入前実験を、一般にまず実施して、 ステント挿入の適当な位置を決定する。次いでガイドワイヤーを、該病巣または 挿入しようとするサイトを介して侵入させ、その後挿入すべきステントを圧潰形 状に維持することを可能とする、送り出しカテーテルを通す。典型的には、ステ ントは圧縮可能であり、従って小さなカテーテルを介して小さな空洞を通して挿 入でき、次いで該ステントが所定の位置に達したら、これを大きな径にまで膨脹 させる。一旦膨脹すると、該ステントは物理的に該通路の壁を離された、解放状 態に強制的に維持する。これら自体は小さな開口を通して挿入でき、かつ依然と して大きな径の空洞または通路を解放状態に維持できる。このステントは自己− 膨脹性であり（例えば、ウォールステントおよびジャイアンツルコステント）、 気球膨脹性（例えば、パルマッツ(Palmaz)ステント、ストレッカー(Strecker)ス テント）であり、または温度変化により移植可能（例えば、ニチノールステント ）である。典型的には、放射線医学的または直接観察による制御下で、該ステン トが処置すべき器官内の狭窄部を横切って正確に配置するように特別な注意を払 いつつ、ステントを所定の位置に移動させる。次いで、送り出しカテーテルを除 去し、該ステントを足場としてそれ自体の上に立たせておく。しばしば、挿入後 の実験（通常はX-線実験）を利用して、適当に配置されていることを確認する。 本発明の好ましい態様においては、胆管障害を除去する方法を提供し、該方法 は胆管ステントを胆汁通路内に挿入する工程を含み、該ステントは一般的に管状 構造をもち、該構造の表面は、該胆管障害が排除されるように、上記のような組 成物で被覆されている。簡単に言えば、該共通の胆管の腫瘍成長過多は、生体と 適合しない、進行性の胆汁うっ滞性黄疸を生ずる。一般に、肝臓から十二指腸へ 胆汁を排出する胆嚢系は、最もしばしば(1)胆管細胞からなる腫瘍（胆管癌）、( 2)該胆管を侵襲する腫瘍（例えば、膵臓癌）または(3)該胆管に外来性の圧力ま たは圧縮力を及ぼす腫瘍（例えば、巨大化したリンパ節）によって障害を受ける 。 胆管枝の圧縮を生ずる一次胆管腫並びに他の腫瘍は本明細書に記載のステント を利用して治療できる。一次胆管腫の一例は腺癌であり（これは共通の肝管の分 枝にみられる場合には、クラツキン(Klatskin)腫瘍とも呼ばれる）。これらの腫 瘍は該胆管系の胆管癌、総胆管細胆管癌または腺癌とも呼ばれる。胆管に影響を 与える良性の腫瘍（例えば、胆管系のアデノーマ）および稀な場合としての胆管 の偏平細胞癌および胆嚢の腺癌は、胆管枝の圧迫を生じ、従って胆管障害を生ず る可能性がある。 胆管枝の圧迫は、最も一般的には肝臓および膵臓の腫瘍によるものであり、こ れら腫瘍は該胆管を圧迫し、結果としてこれに障害を及ぼす。膵臓由来の腫瘍の 多くは、膵管の細胞から生ずる。これは、６カ月生存の平均で、癌の高い死亡率 を与える型であり（癌による全死者の5%に相当し、米国では１年当たり26,000名 の新たな患者がある）、１年生存率は僅かに10%である。これらの腫瘍が膵臓の 頭部に局在した場合、胆管障害を高い頻度で生じ、これは患者生命の特性を大幅 に損なう。全ての型の膵臓腫瘍は一般的に膵臓癌と呼ばれるが、細胞学的な亜種 があり、腺癌、腺偏平細胞癌、嚢胞腺癌、および胞状細胞癌を包含する。上記の ような肝腫も、胆管枝の圧迫を生じ、従って胆管の障害を生ずる。 本発明の一態様においては、胆管ステントは幾つかの方法の一つによって胆汁 通路に挿入される。即ち、上端部から、腹部壁および肝臓を介して針を挿入する ことにより(皮下、経肝臓での胆管造影図、即ち“PTC”)、末端部から、口、胃 または十二指腸を介して挿入された内視鏡を通して胆管にカニューレを挿入する ことにより（内視鏡逆行胆管造影図、即ち“ERCP”）あるいは外科手術中の直接 的切開により挿入される。挿入前の実験、即ちPTC、ERCPまたは外科手術時点で の直接的可視化は、一般にステント挿入のための適当な位置を決定するために行 われるべきである。次いでガイドワイヤーを該病巣を介して進行させ、その後送 り出しカテーテルを通して、該ステントを圧潰状態で挿入できるようにする。該 診断的実験がPTCである場合、該ガイドワイヤーおよび送り出しカテーテルは腹 部壁を介して挿入され、一方で元の実験がERCPである場合には、該ステントは口 を介して配置される。次いで、放射線医学的、内視鏡的、または直接的可視化制 御下で、該胆管中の狭窄部を正確に横切って配置するように特別な注意を払って 、このステントを配置する。該送り出しカテーテルは除去され、該ステントは足 場として立ったままとされ、かくして該胆管を解放状態に維持するであろう。も う一つの胆管造影図の撮影を実施して、該ステントが適当に配置されていること を実証する。 更に別の本発明の態様においては、食道障害を排除する方法を提供し、該方法 は食道に食道ステントを挿入する工程を含み、該ステントは一般的に管状の構造 をもち、該構造の表面は、該食道の障害が排除されるように、上記のような抗− 血管形成組成物で被覆されている。簡単に言えば、食道は食物および液体を口か ら胃に輸送するための中空の管である。食道癌またはその隣接器官（例えば、胃 または肺の癌）で生じた癌による侵襲は、食物または唾液の飲み込みを不能にす る。この態様においては、一般的に挿入前の実験（通常はバリウムの飲用または 内視鏡）を実施して、ステント挿入のための適当な位置を決定すべきである。次 いで、カテーテルまたは内視鏡を口を通じて配置させ、ガイドワイヤーを該閉塞 部を通して侵入させる。放射線医学的手法または内視鏡観測による制御下で、ス テント送り出しカテーテルを該ガイドワイヤーに通し、該ステントを該食道の狭 窄部を横切って正確に配置する。挿入後の実験（通常はバリウムの飲用またはX- 線の使用）を、適当に配置されたことを確認するために利用できる。 本発明の他の態様においては、気管／気管支障害を排除する方法を提供し、該 方法は気管または気管支に気管／気管支ステントを挿入する工程を含み、このス テントは一般的に管状の構造をもち、その表面は、気管／気管支障害が排除され るように、上記のような抗−血管形成組成物で被覆されている。簡単に言えば、 気管および気管支は口および鼻から肺に空気を運搬する管である。癌、隣接器官 に生じた癌（例えば、肺癌）の侵襲による該気管の閉塞、または軟骨軟化症（軟 骨リングの弱化）による該気管または気管支の圧潰は、呼吸不能を生ずる。本発 明のこの態様においては、一般的に挿入前の実験（通常は内視鏡）を実施して、 ステント挿入のための適当な位置を決定すべきである。次いで、カテーテルまた は内視鏡を口を通じて配置させ、ガイドワイヤーを該閉塞部を通して侵入させる 。次いで、送り出しカテーテルを該ガイドワイヤー上に通して、圧潰されたステ ントの挿入を可能とする。このステントは、放射線医学的手法または内視鏡観測 による制御下で配置して、該ステントを該狭窄部を横切って正確に配置する。次 いで、該送り出しカテーテルを除去して、該ステントをそれ自体足場として立っ た状態としておく。挿入後の実験（通常は気管支鏡検査法）を、適当に配置され たことを確認するために利用できる。 本発明のもう一つの態様においては、尿道障害を排除する方法が提供され、該 方法は尿道ステントを尿道内に挿入する工程を含み、該ステントは一般的に管状 の構造をもち、該構造の表面は、該尿道障害を排除するように、上記のような抗 −血管形成組成物で被覆されている。簡単に言えば、尿道はペニスを介して膀胱 から排液するための管である。前立腺肥大による、尿道が該前立腺を通る際の該 尿道の外因性の狭窄は見掛け上は60歳を越える全ての男性に生じ、段階的な排尿 の困難性を引き起こす。この態様においては、一般的に挿入前実験（通常は内視 鏡または尿道造影法）をまず実施して、ステント挿入の適当な位置を決定すべき である（該位置は下端部においては、外部尿道括約筋の上部であり、上端部にお いては膀胱頸部とほぼ平行な位置である）。次いで、内視鏡またはカテーテルを 陰茎開口部を通して配置させ、かつガイドワイヤーを膀胱内に侵入させる。次い で、送り出しカテーテルを該ガイドワイヤー上に通し、ステントの挿入を可能と する。次に、該送り出しカテーテルを除去して、該ステントを所定の位置で膨脹 させる。挿入後の実験（通常は内視鏡または逆行性尿道造影法）を、ステントが 適当な位置にあることを確認するのに利用できる。 本発明の他の態様においては、脈管障害を排除する方法が提供され、該方法は 血管に脈管ステントを挿入する工程を含み、該ステントは一般的に管状の構造を もち、該構造の表面は、該脈管障害が排除されるように、上記のような抗−血管 形成組成物で被覆されている。簡単に言えば、ステントは動脈および静脈両者の 広範な血管に配置して、誤った血管形成サイトにおける再発性狭窄症を防止し、 血管形成により処置した場合には失敗するであろう狭窄の治療、および外科手術 後の（例えば、裂開移植片狭窄）の治療を可能とする。適当なサイトの代表的な 例は、腸骨、腎臓、および冠動脈、上大静脈および裂開移植片内部を包含する。 一態様において、血管造影をまず実施して、ステントを配置するためのサイトを 局在化する。これは、典型的にはX-線撮影の際に動脈または静脈内に挿入された カテーテルを介して放射線不透過性造影剤を注入することにより達成される。次 いで、カテーテルを、大腿部動脈、腕部動脈、大腿部静脈または腕部静脈内に、 皮下的にまたは外科的に挿入し、透視検査法による誘導の下で、該脈管系を介し て操作することにより、適当な血管内に侵入させる。次いで、ステントを該脈管 狭窄を横切って配置させることができる。挿入後の血管造影を、ステントの適当 な配置を確認するために利用することができる。外科手術における抗−血管形成組成物の利用 上記の如く、抗−血管形成組成物は広範な外科手術において利用できる。例え ば、本発明の一局面においては、抗−血管形成組成物（例えば、スプレーまたは フィルム形状の）を、腫瘍の除去前にある領域に噴霧または塗布して、正常な周 辺の組織を悪性の組織から分離し、および／または周辺の組織への疾患の拡がり を防止することができる。本発明の他の局面においては、抗−血管形成組成物（ 例えば、スプレー形状の）を、内視鏡手法を介して分配して、腫瘍を被覆し、あ るいは所定の局部の血管形成を阻害することができる。本発明の更に他の局面に おいては、本発明の抗−血管形成組成物で被覆されている外科メッシュを、これ を使用する可能性のあるあらゆる手順において利用できる。例えば、本発明の一 態様においては、抗−血管形成組成物で被覆されている外科メッシュを、腹部の 癌の切除手術（例えば、結腸切除後）中に使用して、該構造に対する支持体を与 え、かつ該抗−血管形成ファクタのある量を放出させることができる。 本発明の更なる局面においては、腫瘍切除サイトの治療法が提供され、該方法 は、癌の局所的再発および該サイトにおける新たな血管形成を阻害するように、 該切除に引き続き、腫瘍切除周辺部に上記の抗−血管形成組成物を投与すること を含む。本発明の一態様においては、該抗−血管形成組成物（または抗−血管形 成ファクタのみ）を、該腫瘍切除サイトに直接投与する（例えば、該組成物また はファクタを該腫瘍の切除部周辺にガーゼにより、刷毛によりあるいはその他の 方法で塗布する）。あるいは、該抗−血管形成組成物またはファクタは、投与前 に公知の外科用ペーストに配合することができる。本発明の特に好ましい態様に おいては、該抗−血管形成組成物を、悪性部の肝臓からの切除後または神経外科 手術後に適用する。 本発明の一局面において、（上記のような）抗−血管形成組成物は、乳房、結 腸、脳および肝癌を包含する広範な腫瘍の切除部周辺に投与できる。例えば、本 発明の一態様においては、抗−血管形成組成物は切除に引き続き神経系の腫瘍サ イトに投与して、該サイトにおける新たな血管の形成を阻害することができる。 簡単に言えば、高度に機能的に局在化されており、即ち各特定の解剖学的領域は 特定の機能を果たすように特定されている。従って、脳疾患の型よりもしばしば 重要なのは脳病理の位置である。キー領域における比較的小さな病巣が、余り重 要でない領域におけるより大きな病巣よりも破壊的であり得る。同様に、脳表面 上の病巣を外科的に切除するのは容易であるが、脳の深部に位置する同一の腫瘍 を外科的に切除するのは困難である（該腫瘍に到達するまでに余りに多くの生き た構造を通して切除する必要がある）。また、良性の腫瘍であっても、幾つかの 理由から危険を伴う。即ち、これらはキー領域で成長し、しかも著しい損傷を生 ずる可能性があり、これらは外科的な切除により治癒するかも知れないが、該切 除は不可能であり、最後に未検査のまま放置すると、高い頭蓋内圧を生ずる可能 性がある。頭蓋は膨脹不能な閉じた空間である。従って、ある位置で何物かが成 長すると、他の何物かが他の位置を圧迫するはずであり、結果として頭蓋内に高 い圧を生ずるか、あるいは高い頭蓋内圧を生ずる。このような状態を未処置のま ま放置すると、生きた構造が圧迫され、死をもたらす可能性がある。CNS（中枢 神経系）悪性疾患の発生率は100,000当たり8-16である。脳の一次悪性疾患の予 後は悲惨な結果であり、外科的切除後においてさえ、その生存率メジアンは１年 未満である。これらの腫瘍、特にグリオーマは、支配的な局所疾患であり、外科 的切除後に該疾患の元の位置の２cm以内の部分に再発する。 本明細書に記載した組成物および方法を利用して治療できる脳腫瘍の代表的な 例は、グリア腫瘍（例えば、未分化星状細胞腫、多形性グリア芽腫、毛様星状細 胞腫、寡突起膠腫、上衣腫、粘液乳頭上衣腫、上衣下細胞腫および脈絡膜叢乳頭 腫）、神経系腫（例えば、神経芽腫、神経節神経芽腫、神経節神経腫および髄芽 腫）、松果腺腫（例えば、松果体芽細胞腫および松果体細胞腫）、髄膜腫（例え ば、髄膜腫、髄膜血管外皮細胞腫、髄膜肉腫）、神経鞘細胞腫（例えば、シュワ ン鞘腫（神経繊維鞘腫）および神経繊維腫）、リンパ腫（例えば、ホジキンスお よび非−ホジキンスリンパ腫（多数の亜種、一次および二次両者を含む））、形 成異常腫（例えば、クラニオファリンジオーマ、表皮様嚢胞、皮様嚢腫およびコ ロイド嚢胞）および転移性腫瘍（これらは実質上如何なる腫瘍からも生じ、最も 一般的なものは肺、乳房、メラノーマ、腎臓および胃腸管腫瘍由来のものである ）を包含する。抗−血管形成組成物の他の治療上の利用 腫瘍の他にも、血管の異常な成長によって特徴付けられる非−腫瘍性の血管形 成−依存性の多数の疾患も、本発明の抗−血管形成組成物または抗−血管形成フ ァクタで治療することができる。このような非−腫瘍性の血管形成−依存性の疾 患の例は角膜の新血管形成、肥大性瘢痕およびケロイド、増殖性糖尿病性網膜症 、リューマチ性関節炎、動静脈形成異常（上で議論したもの）、アテローム硬化 性プラク、遅延性創傷治癒、血友病関節症、非−結合性骨折、オスラー−ウエー バー(Osler-Weber)症候群、乾癬、化膿性肉芽腫、硬皮症、トラコーマ、月経過 多（既に議論した）および脈管癒着を包含する。 特に、本発明の一局面においては、角膜新血管形成（角膜移植片新血管形成を 含む）の治療法が提供され、該方法は血管形成が阻害されるように、角膜に（上 記のような）抗−血管形成組成物の治療上有効な量を投与する工程を含む。簡単 に言えば、角膜は通常血管の不足した組織である。しかしながら、幾つかの病理 的状態においては、毛細管が、角膜縁の角膜周囲血管叢から角膜に拡がる可能性 がある。角膜が血管形成する場合、角膜が濁る恐れがあり、これは患者視覚の鋭 敏さを低下する。角膜が完全に不透明となった場合には、完全に視覚喪失となる 可能性がある。 新血管形成を誘発する過程に依存して、血管は種々のパターンおよび深度で角 膜内に侵入できる。これらのパターンは、伝統的に眼科医によって以下の型で定 義されている。即ち、トラコーマ性パンヌス、癩病性パンヌス、フリクテン性パ ンヌス、変性パンヌスおよび緑内障性パンヌス。角膜間質も、前毛様体動脈の分 枝によっても侵襲され（間隙血管形成と呼ばれる）、これは幾つかの異なる臨床 上の病巣、即ち末端ループ、「ブラシー状」パターン、日傘状、格子状、間隙ア ーケード（強膜血管からの）、および異常に不規則な血管を生ずる。 広範な疾患が角膜新血管形成により生じ、例えば角膜感染症（例えば、トラコ ーマ、ヘルペス性単純角膜炎、リーシュマニア症および回旋糸状虫症）、免疫学 的過程（例えば、移植片拒否反応およびスティーブンス−ジョンソン(Stevens-J ohnson's)症候群）、アルカリ焼け、トローマ、炎症（あらゆる原因による）、 毒性および栄養欠乏状態およびコンタクトレンズ着用による合併症を包含する。 角膜新血管形成は様々な原因によるが、攻撃および後の血管内部成長に対する 角膜の応答は、該原因とは無関係に類似している。簡単に言えば、傷害の位置は 、角膜縁の臨界的距離範囲内に位置するこれらの病巣のみが血管形成応答を誘発 す る場合に重要になると思われる。これは、血管の侵襲を引き起こす該血管形成フ ァクタは該病巣サイトにおいて生成され、かつその効果を及ぼすように、（該角 膜縁の）血管に最も近接するサイトまで拡散する必要があるという事実によるも のと考えられる。角膜縁からある距離を越えると、これは最早不可能となり、ま た該縁部内皮は角膜への成長を誘発しないであろう。この過程には幾つかの血管 形成ファクタが関与しており、その多くは炎症性応答をもつ生成物である。事実 、角膜の新血管形成は炎症性細胞浸潤と関連して生ずるに過ぎないと思われ、ま た血管形成の程度は該炎症反応の程度に比例する。角膜浮腫は、更に角膜基質外 郭構造を弛緩させることにより血管の内部形成を容易にし、毛細管が成長し得る 「最小抵抗」の通路を与える。 この初期炎症反応に引き続き、角膜への毛細管の成長は、他の組織にみられる のと同様な様式で進む。該角膜縁部毛細管および細静脈の正常で不活発な内皮細 胞が刺激されて、分裂しかつ移動する。該内皮細胞はその元の血管から張り出し てそれを包囲する基部膜および組織を消化し、該膜および組織を介して移動し、 かつ血管形成刺激の源に向かって移動する。このブラインド末端萌芽(blind end ed sprouts)は内腔を獲得し、次いで一緒に融着されて、毛細管ループを形成す る。最終的には、角膜間質内に脈管叢を確立する。 本発明の抗−血管形成組成物は血管形成プロモータの刺激作用を遮断し、内皮 細胞分裂を減じ、内皮細胞の移動を減じ、かつ該内皮によって分泌されるタンパ ク分解酵素の活性を阻害することにより役立つ。 本発明の特定の好ましい態様においては、抗−血管形成ファクタは局所投与用 の塩水溶液として調製でき（眼科用処方物において通常使用されている任意の保 存剤および抗菌剤との組み合わせで）、点眼薬として投与できる。この抗−血管 形成ファクタ溶液は、その純粋な形で調製され、１日当たり数回投与される。ま た上記の如く調製した抗−血管形成組成物も、角膜に直接投与できる。好ましい 態様においては、該抗−血管形成組成物は角膜と結合する粘膜−接着性ポリマー を含むように調製される。更なる態様においては、該抗−血管形成ファクタおよ び抗−血管形成組成物は、公知のステロイド療法の補助として利用できる。 血管形成応答（例えば、薬品焼け）を誘発する高い確率をもつものとして知ら れる角膜病巣においても、局所療法は予防的な意味から有用である。これらの例 において、治療（ステロイドとの組み合わせにおいても）は、後の合併症の防止 を助けるために、即座に実施することができる。 他の態様においては、上記の抗−血管形成組成物は、顕微鏡による誘導下で、 眼科医により、角膜間質に直接注入することができる。注入すべき好ましいサイ トは、個々の病巣の形態に応じて変化するが、該投与の最終目的は、該組成物を 血管系の前進フロント部（即ち、血管と正常な角膜との間に散在する）に配置す ることである。多くの場合において、これは、前進する血管から角膜を「保護」 するために角膜縁部周辺への注入を含むであろう。この方法は、また角膜の創傷 後の短時間内に利用して、予防的に角膜新血管形成を防止することも可能である 。この状況において、この物質を、該角膜病巣とその不当に高い縁部血液供給部 との間に散在する角膜縁部周辺に注入できた。このような方法は、また移植角膜 の毛細血管侵襲を防止するために、同様な様式で利用することができる。徐放性 剤形では、注入は僅かに１年当たり２〜３回必要とされるに過ぎない。該注入溶 液にはステロイドを添加して、該注入自体に起因する炎症を減じることができる 。 本発明の別の局面においては、肥大性瘢痕およびケロイドの治療方法が提供さ れ、該方法は上記の抗−血管形成組成物の１種を肥大性瘢痕およびケロイドに投 与する工程を含む。 簡単に言えば、創傷および瘢痕形成の治癒は、炎症、増殖および成熟の３段階 で起こる。第一の段階、即ち炎症は、皮膚を破壊するのに十分な重度の創傷に応 答して生ずる。３〜４日間継続するこの段階中に、血液および組織流は、該創傷 を受けた表面を結合するように機能する接着性のクロットおよび繊維素ネットワ ークを形成する。これに増殖段階が続き、この段階においては、該創傷端部から の毛細血管および結合組織の内部成長があり、かくして皮膚の損傷部が閉じられ る。最後に、一旦毛細血管および繊維芽細胞の増殖は停止し、成熟段階が開始し 、この段階において該瘢痕は収縮して、細胞数および血管数が減少し、平坦かつ 白色となる。この最終段階は６〜12カ月を要する可能性がある。 過度の結合組織が生成され、かつ該創傷が永続的に細胞過多状態を維持した場 合、該瘢痕は赤く盛り上がった状態にある可能性がある。該瘢痕が元の創傷の境 界部分に維持された場合、これは肥大性瘢痕と呼ばれるが、これが元の瘢痕を越 えて、周辺の組織内に広がった場合には、該病巣はケロイドと呼ばれる。肥大型 の瘢痕およびケロイドは瘢痕形成の該第二および第三段階に生成される。幾つか の創傷は、とりわけ内皮および繊維芽の過度の増殖を生ずる傾向があり、これら は火傷、開口性創傷、および感染性創傷を包含する。肥大性瘢痕については、あ る程度の成熟が起こり、次第に改善される。しかしながら、ケロイドの場合、実 際の腫瘍を形成し、これは極めて大きくなる可能性がある。このような場合、自 然の改善は稀である。 従って、本発明の一態様においては、上記の抗−血管形成ファクタのみまたは 抗−血管形成組成物を、直接肥大性瘢痕またはケロイド内に注入して、これら病 巣の進行を阻止する。注入の頻度は、（存在する場合には）使用したポリマーの 放出速度および臨床的な応答に依存するであろう。この治療法は、肥大性の瘢痕 およびケロイドを発生することが知られている症状（例えば、火傷）の予防的治 療において特に価値があり、また好ましくはその増殖段階が進行を開始した後に （最初の損傷後約14日）で、しかも肥大性の瘢痕またはケロイドが発生する前に 開始される。 本発明の他の局面においては、新血管性緑内障の治療法が提供され、該方法は 血管の形成を阻害するように、目に抗−血管形成組成物の治療上有効な量を投与 する工程を含む。 簡単に言えば、新血管性緑内障は目の虹彩中に新たな毛細血管が発生した病理 的状態である。この血管形成は、通常瞳孔縁部に位置する血管を由来とし、虹彩 の基部を横切って、肉柱の網状構造に進む。繊維芽および他の結合性の組織要素 が毛細血管の成長に関与し、繊維血管膜が発生し、これは虹彩の前方表面を横切 って広がる。場合によって、この組織は、癒着を形成する前眼房角に達する。こ れらの癒着は結果的に融合、瘢痕および収縮を生じて、後に該前眼房角を閉塞し てしまう。該瘢痕形成は、該角を介する水性体液の肉柱の網状構造への十分な排 出を阻害し、結果として失明に導く可能性のある眼内圧の増大をもたらす。 新血管性緑内障は、一般的に網膜の出血が支配的である疾患の合併症として生 ずる。特に、この疾患に罹った患者の約1/3は、糖尿病性網膜症をもち、またそ の28%は中心網膜静脈閉塞をもつ。他の原因は慢性網膜剥離、最終段階の緑内障 、頸動脈障害疾患、後水晶体繊維増殖症、鎌状赤血球貧血、眼内腫、および頸動 脈空洞性フィステルを包含する。初期段階において、新血管性緑内障は高倍率ス リットランプ生物顕微鏡により診断でき、ここでは虹彩表面上の小さな、膨脹し た、まとまりのない毛細血管（フルオレセインを漏らす）として出現する。細菌 のゴニオスコピーは繊維血管性バンドによる前眼房角の進行性の遮断を立証して いる。この前眼房角は依然開放状態にあるが、伝統的な治療法が役立つかもしれ ない。しかしながら、該角が一旦閉塞されると、該圧を緩和するために、外科的 な手段の介入を必要とする。 従って、本発明の一態様においては、抗−血管形成ファクタ（これ単独または 上記のような抗−血管形成組成物として）を、目に局所的に投与して、初期の新 血管性緑内障を治療することができる。 本発明の他の態様においては、該前眼房角の領域に抗−血管形成組成物を注入 することにより、該組成物を移植することも可能である。これにより、抗−血管 形成ファクタの持続的な局所的増大をもたらして、該領域における血管成長を阻 止する。虹彩の前進性の毛細血管と該前眼房角との間に配置される、移植された または注入された抗−血管形成組成物は、新血管形成からの開放角を「防御」で きる。毛細血管は抗−血管形成組成物のかなりの半径領域内では成長しないであ ろうから、該角の開放性が維持できる。他の態様においては、該抗−血管形成フ ァクタが継続的に該水性体液内に放出されるような任意の位置に、抗−血管形成 組成物を配置することも可能である。これにより、該体液中の該抗−血管形成フ ァクタ濃度が高められ、結果として虹彩の表面および該異常な毛細血管が該体液 に浸漬され、かくして医薬を放出するもう一つのメカニズムが与えられる。これ らの治療様式は予防的にも、また既存の治療との組み合わせにおいても有用であ り得る。 本発明のもう一つの局面においては、増殖性の糖尿病性網膜症の治療法が提供 され、該方法は血管の形成を阻害するように、目に抗−血管形成組成物を、治療 上有効な量で投与する工程を含む。 簡単に言えば、糖尿病性網膜症の病理は、新血管性緑内障について上記したも のと同様であると考えられている。特に背景となる糖尿病による網膜症は、網膜 の低酸素症の影響下で、増殖性の糖尿病性網膜症に転化するものと考えられてい る。一般的に、新血管性組織は、視覚神経（通常端部の10mm以内）および組織灌 流が不十分な領域における網膜表面から萌芽する。初めに、該毛細血管が網膜内 部の限られた膜と硝子体の後部表面との間で成長する。場合により、該血管は該 硝子体中でおよび該網膜内部の限られた膜を貫いて成長する。該硝子体が収縮さ れるにつれて、該血管に牽引力がかかり、該血管に剪断力を及ぼし、かつ出血の ために該硝子体は遮蔽される。網膜における瘢痕形成による繊維性の牽引力は網 膜剥離を生ずる可能性もある。 公知の治療法の選択は、網膜組織を減ずるための全網膜的な光凝固であり、こ れにより網膜の酸素要求量が減少する。初期には効果的であるが、高い再発率を 有し、網膜の他の部分に新たな病巣が形成される。この治療法の複雑さは、患者 の周辺視野の50%までの減少、角膜の機械的な磨滅、レーザー照射に起因する白 内障の形成、急性緑内障の発生、および網膜下新血管成長の刺激（これらは視野 の喪失を結果する）等を含む。結果として、この方法は数種の危険因子が存在す る場合、および危険−利益比が明らかに、該方法の利用にとって有利である場合 にのみ実施される。 従って、本発明の特に好ましい態様においては、増殖性の糖尿病性網膜症は、 該水性の体液または硝子体中に抗−血管形成ファクタ（または抗−血管形成組成 物）を注入し、該網膜内の抗−血管形成ファクタの局所的濃度を高めることによ って治療できる。好ましくは、この治療は光凝固処置を必要とする重度の疾患と なる前に、開始すべきである。本発明の他の態様においては、該新血管性病巣に 栄養供給する動脈を塞栓処理（上記のような抗−血管形成組成物を使用して）す ることもできる。 本発明の他の局面においては、後水晶体繊維増殖症の治療法が提供され、該方 法は血管形成が阻害されるように、目に抗−血管形成ファクタ（または抗−血管 形成組成物）を、治療上有効な量で投与する工程を含む。 簡単に言えば、後水晶体繊維増殖症は、酸素治療を受けた未熟児にみられる状 態である。特に側頭部における末梢網膜血管形成が、胎児生活の終了時点までに 十分に形成されない。過剰の酸素（その期間において生理的であるレベルにおい てさえ）および酸素フリーラジカルの形成は、この未熟児の網膜の血管に対して 創傷を生ずることから、重要であると考えられている。これらの血管は収縮し、 次いで酸素に暴露された際に構造的に消失してしまう。結果として、末梢網膜は 血管形成せず、かつこれに続いて網膜虚血が生ずる。この虚血に応答して、新血 管形成が、正常な網膜と該虚血性の網膜との接合部において誘起される。 この場合の75%において、これらの血管は自然に退化する。しかしながら、残 りの25%においては、毛細血管の成長、繊維血管成分の収縮および該血管および 該網膜両者に及ぼされる牽引力は持続する。これは硝子体の出血および／または 網膜の剥離（これらは盲目に導く）を生ずる。新血管性角−閉塞緑内障も、この 状態の合併症の一つである。 どの場合に自然に治癒し、またどの場合が重度の疾患に進行するかを決定する ことは、しばしば不可能であるので、公知の治療法（即ち、外科手術）は、一般 的に確定された疾患および十分に進行した病理をもつ患者に対してのみ開始され る。この「静観(wait and see)」法は初期の治療処置を不可能にし、合併症へと 進行する25%の患者においては、該疾患は進行し続ける。従って、本発明の一態 様においては、抗−血管形成ファクタ（または上記のような抗−血管形成組成物 ）の局所投与を、この状態に発展する高い危険性をもつ幼児に対して実施して、 後水晶体繊維増殖症の進行の開始を遮断する。他の態様においては、抗−血管形 成組成物の硝子体内注入および／または眼内移植を利用する。このような方法は 、確立された疾患の場合に特に好ましく、外科手術の必要性を減ずる。 本発明の他の局面においては、リュウマチ性関節炎の治療法が提供され、該方 法は血管形成を阻害するように、関節に抗−血管形成組成物を治療上有効な量で 投与する工程を含む。 簡単に言えば、リュウマチ性関節炎における関節の損傷は、炎症（白血球およ び白血球生成物を含む）およびパンヌス組織の発生（新血管組織、結合性組織お よび炎症性細胞）の組み合わせによるものである。一般的に、慢性炎症自体は、 該関節表面に損傷を与えるには不十分であるが、永久的欠損は、一旦繊維血管組 織が軟骨組織を消化しさえすれば、生ずる。 本発明の好ましい態様においては、抗−血管形成ファクタ（上記のような抗− 血管形成組成物を含む）を、外科用ペーストとして関節内注入するかあるいは経 口薬品として投与して、該関節内における血管形成を阻害することができる。こ のような方法の代表的な例の一つは、以下の実施例19においてより詳細に説明さ れる。 上記の如く、本発明の更に別の態様によれば、血管移植片が提供され、該移植 片は合成管を含み、その表面は上記のような抗−血管形成組成物で被覆されてい る。簡単に言えば、血管移植片は、通常ダクロン(Dacron)またはゴルテックス(G ortex)製であり、外科手術的に動脈閉塞部、最も高頻度では大腿部から大動脈に 、あるいは大動脈から膝窩までを短絡するために挿入される。特に込み入った主 な問題は、大動脈−膝窩短絡移植片が新血管内膜過形成と呼ばれる、血管壁中で の内皮下瘢痕−様反応を発生することであり、該過形成は該移植片の何れかの端 部のおよびその近傍の内腔を狭窄し、かつ進行性であり得る。抗−血管形成ファ クタ（または上記のような抗−血管形成組成物）で被覆したまたはこれを含有す る移植片を使用して、該移植片の何れかの端部における新血管内膜過形成の発生 を制限することができる。次いで、該移植片を公知の短絡技術により外科的に配 置することができる。 本発明の抗−血管形成組成物は、また種々の他の様式で使用できる。例えば、 縫合肉芽腫を防止するために、これらを外科用の縫合材に配合したり、月経過多 の治療のために、あるいは女性の産児制限形式として、子宮（IUDと同様な様式 で）に移植したり、子宮内膜症の治療のために、腹膜灌流液または腹膜移植とし て投与したり、全身的化学療法として、活性化内皮細胞に対するモノクローナル 抗体に付着させたり、活性化内皮細胞を識別する放射線標識したモノクローナル 抗体に付着した場合には、診断撮像において利用することができる。 以下の実施例は、本発明を例示する目的で与えられ、本発明を限定するための ものではない。 実施例 実施例１：抗−浸潤ファクタの調製 ホシザメから、胸帯および頭蓋を切除し、次いで外科用メスで擦って、該軟骨 から全ての筋肉と関連する結合組織を除去する。次に、この軟骨を組織粉砕機で ホモジナイズし、2.0Mのグアニジウム塩酸塩および0.02MのMESを含み、pH6.0の 溶液中で２〜５日間、室温にて連続的に攪拌することにより抽出する。 ２〜５日後に、該軟骨抽出物をガーゼのネットに通して、大きな構成物を除去 する。次いで、この濾液をアミコン(Amicon)限外濾過装置に通す。該装置はカッ トオフ分子量100,000を有する螺旋状に巻いたカートリッジを使用する。（分子 量100,000ダルトン未満のタンパク質を含む）この濾液を、3,000ダルトンを越え る分子量をもつタンパク質を保持するアミコン限外濾過装置を使用して、0.02M のMESバッファー(pH6.0)に対して透析する。この方法を利用して、低分子量タン パク質および構成物質並びにグアニジウム塩酸塩を除去する。この透析により、 最終濃度9mg/mlにまで濃縮する。実施例２：抗−血管形成活性に関する種々の試薬の分析 A．ヒヨコ漿尿膜(“Cam”)アッセイ 受精した家禽胚を、殻を含まない培養前に、３日間インキュベートした。この 手順において、該卵の内容物は、エアースペース(air space)の回りに位置する 該殻を除去することにより空にした。次いで、内部殻膜を切断し、該殻の反対側 の端部を穿孔して、該卵の内容物を徐々に尖っていない端部から流し出した。こ の卵内容物を丸底のガラスボウルにあけ、ペトリ皿カバーで覆った。次いで、こ れらを相対湿度90%および3%CO2のインキュベータに入れ、３日間インキュベート した。 タキソール（シグマ社、セントルイス、MI）を、0.5%の水性メチルセルロース 溶液と、該溶液10mlアリコート当たり１、５、10、30mgの濃度で混合した。タキ ソールは水に不溶であるから、ガラスビーズを使用して微粒子を生成した。この 溶液の10μｌアリコートをパラフィルム上で１時間乾燥させて、径２mmの円板を 形成した。次に、この乾燥円板を含むタキソールを、インキュベーションの６日 後に、各CAMの成長端部に注意して配置した。同一の経過時間に渡り、CAM上にタ キソールを含まないメチルセルロース円板を配置することによりコントロール を得た。２日間放置後（インキュベーションの８日後）、立体顕微鏡を使用して その脈管構造について検査した。リポシン(Liposyn)II（白色の不透明な溶液） を該CAMに注入して、血管細部の視認性を高めた。未染色の生きた胚の脈管構造 を、ビデオカメラ(Dage-MTI社，ミシガンシティー、IN)と連動するツァイス(Zei ss)の立体顕微鏡を使用して像形成した。次に、これらのビデオ信号を160倍の倍 率で表示し、イメージ解析装置(Vidas，Kontron; Etching，Germany)を使用して データを記録した。次に、ネガイメージをグラフレコーダー(Model 3000;マトリ ックスインスツルメンツ(Matrix Instruments)，オレンジバーグ、NY)上に形成 した。 ８日−齢の殻をもたない胚の膜を0.1MNaカコジル酸塩バッファー中の2%グルタ ルアルデビドで満たし、付随的な固定液をCAMの下に注入した。その場で10分後 に、該CAMを取り出し、室温にて、新たな固定液中に２時間置いた。次いで、こ の組織を、6%のスクロースを含有するカコジル酸塩バッファー中で、一夜洗浄し た。興味のある領域を、４℃にて、1.5時間、1%の四酸化オスミウム溶液中で後 固定した。次に、該組織を一連の秤量したエタノール中で脱水し、プロピレンオ キシドで溶媒交換し、かつスパー(Spurr)樹脂内に埋設した。薄い切片をダイア モンドナイフで切取り、銅製格子上に配置し、染色し、ジョエル(Joel)1200EX電 子顕微鏡で検査した。同様に、0.5mmの切片を切取り、光顕微鏡観察のためにト ルエンブルーで染色した。 発生の11日目に、ヒヨコ胚を侵食キャスティング(corrosion casting)法で使 用した。メルコックス(Mercox)樹脂(テッドペラ社(Ted Pella，Inc.),レッディ ング、CA)を、30−ゲージの皮下針を使用してCAM脈管構造中に注入した。このキ ャスティング材料は2.5gメルコックスCL-2Bポリマーと0.05gの触媒(55%ベンゾイ ルパーオキシド)とからなり、重合時間５分を有していた。注入後、このプラス チックをその場で１時間室温にて放置し、次いで65℃のオーブン中で一夜放置し た。このCAMを、次に50%の水酸化ナトリウム水性溶液中に入れて全ての有機成分 を消化した。このプラスチックキャストを蒸留水中で十分に洗浄し、風乾し、金 ／パラジウムで被覆し、フィリップス(Philips)走査型電子顕微鏡で観察した。 上記実験の結果を第１〜４図に示す。簡単に説明すると、正常なヒヨコの殻を 含まない卵培養物の一般的特徴は、第1A図に示されている。インキュベーション の６日目において、この胚は血管の放射状に広がった網状構造の中心部に位置し ており、該CAMは該胚に隣接して発生する。これらの成長中の血管は表面近傍に 位置し、容易に肉眼視でき、従ってこの系を血管形成の研究の理想的なモデルと する。該CAMの生きた、未染色の毛細血管網状構造は、立体顕微鏡により非−侵 襲的に撮像できる。第1B図はこのような血管領域を示し、そこでは毛細血管内の 細胞状血液要素がビデオ／コンピュータインターフェースの使用により記録され た。このようなCAM毛細血管網状構造の3-次元構築物は侵食キャスティング法に より示され、走査型電子顕微鏡によって観測される（第1C図）。これらのキャス ティングは、血管が融着毛細血管の単層を形成している該CAM表面に向かって突 出する下部血管を示している。 該CAMを通る横断面は外胚葉を示し、該外胚葉は二重細胞層、該外胚葉の下方 に位置する毛細血管を含むより広い中胚葉層、外膜細胞、および内部の単一の内 胚葉細胞層からなる（第1D図）。電子顕微鏡レベルで、該CAM毛細血管の典型的 な構造上の細部が明らかにされている。典型的には、これらの血管は外胚葉の該 内部細胞層と密に結合して存在している（第1E図）。 １、５、10または30mgの濃度のタキソールに48時間暴露した後、各CAMを、生 きた状態で、ビデオ／コンピュータインターフェースを備えた立体顕微鏡で検査 して、血管形成に及ぼす効果を評価した。この撮像条件設定を、160倍の倍率で 使用した。この倍率は該毛細血管内の血液細胞の直接的視認を可能とし、結果と して対象とする領域の血流を容易に捕らえかつ記録できた。この研究のために、 血管形成の阻害を、径２〜６mmの範囲の毛細血管網状構造をもたない該CAMの領 域として定義した。阻害領域は血管血流に乏しく、かつタキソールを含有するメ チルセルロースの実験条件下でのみ観測され、タキソールに乏しい円板のコント ロール条件下では、毛細血管系の発生には何の効果も見られなかった。種々の濃 度における、タキソールの効果のドーズ−依存性実験データを第II表に示す。 典型的なタキソール−処理したCAM(第2A図および第2B図)が図示され、そこに は径６mmであると測定された、無血管領域上の中心に配置された透明なメチルセ ルロース円板がある。僅かに高い倍率において、このような無血管領域の周辺は 全くはっきりしており（第2C図）、周辺の機能性の血管は、しばしば該タキソー ル源から方向を変えた（第2C図および第2D図）。このような血流の角の方向転換 は、正常な条件下では全く観測されなかった。タキソールの効果のもう一つの特 徴は、血液細胞の凝集を表す、該無血管領域内での血液の島の形成であった。 該タキソール−処理したCAMの関連する形態学的変更は、光および電子顕微鏡 レベル両者において容易に明らかとなる。表示の便宜のために、正常な状態から 該無血管状態への一般的な転移の３つの異なる段階を示す。該無血管領域の周辺 部近傍で、該CAMは、３つの全ての胚芽層内の有糸分裂細胞の豊富さによって特 徴付けられる（第3A図および第4A図）。この高い有糸分裂は毛細血管内皮細胞に ついての観察とも一致した。しかしながら、この内皮細胞は、接合的には完全の ままであり、血液細胞の浸出を示さなかった。更なる退化によって、該CAMは破 壊および毛細血管の溶解により特徴付けられる（第3B図および第4B図）。典型的 には有糸分裂が阻止された、仮想的な内皮細胞は、依然として血液細胞と近接し た空間関係を維持し、外胚葉の下に存在するが、これらの細胞は接合的に結合さ れていない。該無血管領域の最も中心部は厚い外胚葉および内胚葉層によって特 徴付けられた（第3C図および第4C図）。これらの層は厚くなったが、細胞接合は 完全であり、かつ該層はその構造上の特徴を維持していた。中胚葉内には、散在 する有糸分裂の阻止された細胞が豊富であり、これら細胞は、前の段階で観測さ れた内皮細胞分裂を示さなかった。また、この無血管領域全体に渡り、電子密度 の高い液胞および細胞デブリスによって示されるように、変質細胞が一般的であ った（第4C図）。 概して、この研究は、該CAMにタキソールを適用した後48時間において、血管 形成が阻害されることを立証した。この血管形成阻害は無血管領域を形成し、該 領域はタキソール効果の３つの転移段階によって表された。中心の最も影響を受 けた該無血管ゾーンの領域は、赤血球の浸出を示す、分断された毛細血管を含ん でおり、このことは内皮細胞間の細胞間接合がないことを示している。内胚葉お よび外胚葉の細胞はその細胞間接合を維持しており、従ってこれらの胚芽層は完 全な状態に維持されるが、これらは僅かに厚くなっていた。正常な血管領域を調 べると、血管はその接合的複合状態を維持しており、従ってこの場合も完全であ った。タキソール−処理したゾーンの周辺において、更なる血管成長は阻害され 、これは血管の典型的な方向転換または「湾曲(elbowing)」効果により明らかで あった（第24D図）。 該タキソール−処理した無血管領域は、また該CAMの全ての３つの胚芽層にお ける、豊富な有糸分裂の阻止された細胞の存在を示し、これはタキソールに固有 のものであった。というのは、以前の研究の何れもこのような事象を示さなかっ たからである。有糸分裂が阻止されることにより、内皮細胞は、血管形成に関与 するその正常な代謝機能を果たすことができなかった。比較として、スラミンお よびコルチゾンアセテートにより形成された無血管ゾーンは、該CAM内に有糸分 裂が阻止された細胞を生成せず、これらは単に該処理領域における血管の更なる 成長を阻害したに過ぎなかった。従って、これら試薬は抗−血管形成性ではあっ ても、血管形成過程を攻撃し得る多くの点がある。 我々は、また48時間の期間に渡るタキソールの効果をも観測し、血管形成の阻 害が、その適用後９時間程度で生ずることを知った。組織学的切片は、第3a図お よび第4a図に示された48時間における該無血管領域の最初の転移段階に見られた ものと同様の形態を示した。また、我々は前に観測された無血管領域における再 血管形成過程を観測した。ヘパリンおよびアンギオスタティックステロイドによ って形成される無血管ゾーンはその適用後60時間で再度血管形成することを見出 した。我々の研究においては、タキソール−処理した無血管領域は適用後少なく とも７日間は再血管形成せず、より強力な長期に渡る効果を示した。実施例３：スラミンの封入 １mlの5%ELVAX(5%の酢酸ビニルで架橋したポリ(エチレン−酢酸ビニル))のジ クロロメタン(“DCM”)溶液を、サブ−ミクロンのオーダーに粉砕したナトリウ ムスラミンの一定量と混合する。この混合物を30mlの平底試験管中の、５mlの5% ポリビニルアルコール(“PVA”)水性溶液中に注入する。次いで、種々の重量の 薬物を含有する管を、自動的に攪拌しつつ、40℃にて90分間、多重サンプル水浴 に浮遊させる。これらの混合物を取り出し、粒度分析のために微小球サンプルを 採取する。これら管を1000ｇにて５分間遠心処理する。PVA上澄を取り出し、分 析のために保存する（非−封入薬物）。次いで、この微小球を５mlの水で洗浄（ 攪拌）する。この５mlの洗液を分析のために保存する（表面結合薬物）。次に、 微小球を50μｌのメタノールで湿潤し、１mlのDCM中で攪拌して、該ELVAXを溶解 する。次いで、該微小球を40℃に加温し、50℃の水５mlを攪拌しつつ、ゆっくり 添加する。この手順はDCMの迅速な蒸発を生じ、かくしてナトリウムスラミンは ５mlの水中に放出される。次いで、全体で3つの５mlのサンプルを薬物の含有率 につきアッセイした。 ナトリウムスラミンはλmax 312nmでuv/visを吸収する。この吸収は、水およ び5% PVA両者において、０〜100μg/mlの範囲で線形である。該薬物は強力に蛍 光発光し、312nmに最大励起波長をもち、かつ400nmに最大発光強度をもつ。この 蛍光発光は０〜25μg/mlの範囲で定量化可能である。 結果を第５〜10図に示す。簡単に説明すると、微小球の粒度分布は、DCM中の 薬物の吸収によって影響されないことが分かる（第５図および第６図参照）。20 〜60μｍの範囲で微小球の良好な収率を得ることができる。 スラミンの封入は極めて低い(〈1%)（第８図参照）。しかしながら、DCM中の 薬物の重量が増すと、封入される薬物の総量は増大するが、％封入率は減少した 。第７図に示した如く、50μｇの薬物を50mgのELVAX中に封入できる。10%のNaCl を含有する5%PVA中のナトリウムスラミンの封入を、第９〜10図に示した。実施例４：タキソールの封入 500μｇのタキソールまたはバッカチン（タキソール類似体、インフラジムフ ァーマシューティカルズ社(Inflazyme Pharmaceuticals Inc.)、バンクーバー、 ブリティッシュコロンビア、カナダから入手可能）を１mlの50:50 ELVAX:ポリ-1 -乳酸のDCM溶液中に溶解する。次いで、微小球を、溶解装置（6-スピンドル溶解 テスター、ファンダーキャンプ、ファンケルインダストリーズ社(VanderKanp，V an Kell Industries Inc.)，U.S.A.から入手可能）を使用して、３回、200rpmに て42℃で３時間処理して調製する。このようにして調製した微小球を２回水中で 洗浄し、顕微鏡観察によりサイズ決定する。 タキソール封入の測定はuv/visアッセイ（uv/vis，λmax 237nm，励起波長237 nm、発光波長325nmでの蛍光アッセイ、蛍光測定の結果は角括弧[]中に示す）に より行う。上記の手順を使用して、58μｇ(+/-12μg)[75μg(+/-25μg)]のタキ ソールを、全体で500μｇの出発物質から封入できる。これは12%(+/-2.4%)[15%( +/-5%)]の元の重量、または1.2%(+/-0.25%)[1.5%(+/-0.5%)](重量基準)のポリマ ーを表す。オーブン中で37℃での18時間のタンブリング後、10.3%(+/-10%)[6%(+ /-5.6%)]の全タキソールが該微小球から放出された。 バッカチンについては、全体で500μｇの出発物質から、100+/-15μg[83+/-23 μg)]のバッカチンを封入できる。これは20%(+/-3%)[17%(+/-5%)]のバッカチン の元の重量、および2%(+/-0.3%)[1.7%(+/-0.5%)]（重量基準）のポリマーを表す 。オーブン中で37℃での18時間のタンブリング後、55%(+/-13%)[60%(+/-23%)]の バッカチンが該微小球から放出された。実施例５：抗−血管形成組成物を含有する外科用ペーストの分析 体重約300gのフィッシャー(Fisher)ラットを麻酔し、横方向の上部腹部の１cm の切開を行う。生きた9L神経膠肉腫細胞1x106個を含む2/10mlの塩水（組織培養 物から、使用の直前に溶出したもの）を、肝臓カプセルを介して27ゲージの針で １cmの孔を開けることにより、５個の肝葉のうちの２個に注入する。この傷害を もつ腹部を皮膚クリップを備えた6.0の再吸収性縫合糸で閉じ、このGAを停止す る。 ２週間後、腫瘍沈着物は約１cmであると測定される。この時点で、肝腫を切除 し、かつ肝臓の剥き出し縁部を止血剤で包む。これらのラットを２群に分ける。 即ち、その半分にはポリマー担体のみを投与し、残りの半分には抗−血管形成組 成物を投与する。 肝臓の切除後２、７、14、21および84日目にラットを殺す。特に、尾の背側の 静脈内にユータニル(Euthanyl)を注入することにより、安楽死させる。肝臓、脾 臓および両方の肺を取り出し、組織学的分析を行って、該腫瘍を抗−血管形成活 性について調べる。実施例６：ラット動脈の塞栓 体重約300gのフィッシャー(Fisher)ラットを麻酔する。無菌手順を使用して、 横方向の上部腹部の１cmの切開を行い、肝臓を同定する。生きた9L神経膠肉腫細 胞1x106個を含む2/10mlの塩水（組織培養物から、使用の直前に溶出したもの） を、肝臓カプセルを介して27ゲージの針で１cmの孔を開けることにより、５個の 肝葉のうちの２個に注入する。通常の塩水1/10mlを、針を抜き取る際に該針中に 注入して、確実に腹腔内に細胞のこぼれがないことを保証する。ゲルフォームの 綿撤子を、該穿刺サイト各々上に配置して、止血を確実にする。この傷害をもつ 腹部を、皮膚クリップを備えた6.0の再吸収性縫合糸で閉じ、この麻酔を終了す る。このラットを動物飼育設備に戻し、14日間標準的な食事を採らせる。この時 点において、腫瘍沈着物は径約１cmであると測定される。ウエスター(Westar)ラ ットおよび結腸癌細胞系（ラジオロジックオンコロジー研究所(Radiologic Onco logy Lab.)，M.D．Anderson,ヒューストン、テキサス）を使用して、同様の手順 を繰り返す。この例においては、該腫瘍沈着物各々の径を１cmとするのに、注入 後３週間を要する。 ラット種に依存して、２または３週間後に、同一の一般的な麻酔処置を行い、 中央腹部切開を行う。十二指腸を裏返して、胃十二指腸動脈を同定し、かつ分離 する。該胃十二指腸動脈(GDA)の中央部分における切断サイトの上下に結び目を 配置し、0.038インチのポリエチレン管を、手術用顕微鏡を使用して、回帰的様 式で該動脈内に導入する。該挿入点下部の結び目は該動脈を結合し、一方その上 方のものは該カテーテルを所定の位置に固定するであろう。X-線撮影のために、 該カテーテルを介して0.5mlの60%放射線不透過性造影剤を注入することにより血 管造影を行う。次いで、粒径15〜200μｍの粒子を、胃十二指腸動脈カテーテル を介して、該手術用顕微鏡で観察される流動が停止されるまで、少なくとも30秒 間循環することにより、肝動脈を塞栓する。肝動脈の閉塞は、該GDAカテーテル を通しての血管造影を繰り返すことにより確認する。この手順を利用して、該ラ ットの半分に粒径15〜200μｍのポリマーのみを投与し、かつ残りの半分には粒 径15〜200μｍのポリマー−抗−血管形成ファクタを含む組成物を投与する。上 部GDA結紮糸を締めて、該GDAを閉塞し、該カテーテルを取り出して、止血を確実 にし、（塞栓された）肝動脈を完全な状態にする。該腹部を6.0吸収性縫合糸お よび外科クリップで閉じる。 引き続き、塞栓後２、７、14、21および84日目に、該ラットを殺して、該抗− 血管形成ファクタの有効性を決定する。簡単に説明すれば、麻酔して、無菌的な 注意を払い、中央線切開を行う。該GDAを再度分離し、該GDAと該肝動脈との接合 部近傍（即ち、前に切断したサイトのかなり上方）に結紮糸を配置した後、該血 管の切断部を介して0.038インチのポリエチレン管を挿入し、かつ血管造影を行 う。次いで、該ラットを、尾の背側の静脈内にユータニル(Euthanyl)を注入する ことにより、安楽死させる。一旦安楽死を確認し、胃、脾臓および両方の肺と共 に、肝臓を一塊として取り出す。 ヘマトキシリンおよびエオシン(“HおよびE”)により染色した調製スライド上 で組織学的分析を行う。簡単に説明すると、これらの肺を１センチ間隔で切開し て、該肝静脈を介する、重患の右側における塞栓材料の通過を評価する。該胃お よび脾臓も切開し、腹腔での副次的循環の発生を導く粒子の逆流に由来する、不 注意による固定化を評価する。実施例７：ラットへの胆管ステントの移植 全身麻酔剤を、体重300gのフィッシャーラットに投与する。次いで、１cmの横 方向の切開を、上部腹部について行い、肝臓を同定する。最も表層部の肝葉にお いては、9L神経膠肉腫細胞1x106個を含む0.2mlの塩水（組織培養物から、使用 の直前に溶出したもの）を、肝臓カプセル中に１cmの深さまで27ゲージの針を介 して注入する。ゲルフォームの綿撤子を、該穿刺サイトに配置して、該針の除去 後の止血を達成する。塩水を、針を抜き取る際に注入して、確実に腹腔内または 該針の軌跡に沿った細胞の漏れがないことを保証する。この全身麻酔を終了し、 該動物を動物飼育センターに戻し、通常の食事を採らせる。 ２週間後に、全身麻酔剤を投与し、無菌的な予備処置を利用して、腫瘍を含む 該肝葉を、中線切開部を通して同定する。次いで、該肝臓被膜を通して該腫瘍内 に16ゲージの血管造影針を挿入し、該針に0.038インチのガイドワイヤーを通し 、該針を該ガイドワイヤーを介して引き出す。No．５フレンチ(French)拡張器を 該ガイドを介して該腫瘍内に通し、引き出す。次に、No．５フレンチ(French)放 出カテーテルを、自己−膨脹性ステンレススチールウォールステント（径５mmお よび長さ１cm）を含む該ワイヤー上に通す。このステントを該腫瘍内に配置し、 該ガイドワイヤー送り出しカテーテルを除去する。該ラットの1/3は、該腫瘍中 に挿入された公知のステンレススチールステントをもち、他の1/3はポリマーで 被覆したステンレススチールステントをもち、残りの1/3はポリマー−抗−血管 形成ファクタ化合物で被覆したステントを有する。全身麻酔を終了し、該ラット を動物飼育設備に戻す。 簡単な腹部X-線撮影を２日目に実施して、ステントの開放の程度を評価する。 ユータニルの注入により、ステント挿入後２、７、14、28および56日目にラット を殺し、ラットの安楽死を確認して、その肝臓を一塊として取り出す。ホルムア ルデヒド中で48時間固定した後、該肝臓を0.5mm間隔で切開し、各切開に対して 新たな刃を使用して、該ステントを横方向にも切断する。ＨおよびＥで染色した 組織学的切片を、次に分析して、該ステント内腔への腫瘍の内部成長の程度を評 価する。実施例８：微小球の製造 以下に記載する微小球の製造にとって好ましい装置は、200mlのウォータジャ ケットを備えたビーカー（キマックス(Kimax)またはパイレックス(Pyrex))、ハ ーケ(Haake)循環型水浴、オーバーヘッド攪拌機および径２インチのコントロー ラー（４ブレード、プロペラ型ステンレススチール攪拌機−フィッシャー(Fishe r)製）、500mlのガラスビーカー、ホットプレート／スターラー（コーニング(Co rning)製）、４×50mlポリプロピレン遠心管(ナルゲン(Nalgene))、プラスチッ ク挿入カップを備えたガラスシンチレーションバイアル、テーブルトップ型遠心 分離機(GPR、ベックマン製）、高速遠心機−フロアーモデル(JS 21、ベックマン 製）、メトラー(Mettler)分析天秤(AJ 100，0.1mg)、メトラーディジタルトップ 荷重天秤(AE 163，0.01mg)、自動ピペッター（ギルソン(Gilson)社製）を含む。 試薬は、ポリカプロラクトン(“PCL”、分子量10,000〜20,000、ポリサイエンス ズ(Polysciences)社、ワーリントン、ペンシルバーニア、USA)、「洗浄した」エ チレンビニルアセテート(BHT酸化防止剤を除去するために洗浄した“EVA”)、ポ リ(DL)乳酸(“PLA”、分子量15,000〜25,000，ポリサイエンスズ(Polysciences) 社)、ポリビニルアルコール(“PVA”、分子量124,000〜186,000，99%加水分解、 アルドリッチケミカル社(Aldrich Chemical Co.)，ミルウォーキー、WI，USA)、 ジクロロメタン(“DCM”または「メチレンクロリド」、フィッシャーサイエンテ ィフィック(Fisher Scientific))および蒸留水を含む。A．5%(w/v)ポリマー溶液の調製 調製すべきポリマー溶液に依存して、1.00ｇのPCLまたはPLA、あるいは各0.50 ｇのPLAおよび洗浄したEVAを、20mlのガラスシンチレーションバイアルに正確に 秤り取る。次に、20mlのDCMを添加し、該バイアルにしっかりと栓をする。これ らのバイアルを室温（25℃）にて１時間（場合によっては、振盪処理してもよい ）あるいは該ポリマーが溶解（該溶液は透明となるはずである）するまで、保存 する。この溶液を室温にて少なくとも２週間保存する。B．PVAの5%(w/v)母液の調製 25ｇのPVAを直接600mlのガラスビーカーに量り取る。蒸留水500mlを、３イン チのテフロン被覆した攪拌棒と共に添加する。このビーカーをガラスで覆い、蒸 発による損失を低下させ、300mlの水を含む2000mlのガラスビーカー（これは水 浴として機能する）中に配置する。このPVAを85℃および300rpmにて２時間あ るいは完全に溶解するまで（コーニング(Corning)ホットプレート／攪拌機）攪 拌する。該PVAの溶解は肉眼的検査によって決定できる。即ち、該溶液は透明に なるはずである。次いで、この溶液をガラス栓付き保存容器に移し、４℃にて最 長２カ月間保存する。しかしながら、この溶液は使用または希釈前に、室温まで 加温すべきである。C．微小球の製造法 製造すべき微小球のサイズに基づき（第１表参照）、100mlの該PVA溶液（濃度 は第III表に与えた）を200mlのウォータジャケット付きビーカーに入れる。ハー ケの循環型水浴をこのビーカーに接続し、その内容物を27℃(+/-10℃)にて10分 間平衡化させる。製造すべき微小球のサイズに基づき（第III表参照）、該オー バーヘッド攪拌器の速度を設定し、該オーバーヘッド攪拌機の刃の半分を該PVA 溶液に漬ける。次いで、この攪拌機を始動させ、10mlのポリマー溶液（ポリマー 溶液は製造すべき微小球の型に基いて使用する）を、５mlの自動ピペッターを使 用して、２分間に渡り、該攪拌されたPVAに滴下する。３分後に、該攪拌機の速 度を調節（第III表参照）し、該溶液を更に2.5時間攪拌する。該攪拌ブレードを 該微小球処方物から取り出し、10mlの蒸留水で洗浄し、その洗液を該微小球処方 物に入れる。次に、この微小球処方物を500mlのビーカーに注ぎ込み、ジャケッ トを備えた水浴を70mlの蒸留水で洗浄し、この洗液も該微小球処方物に入れる。 次に、180mlの該微小球処方物をガラス棒で攪拌し、等量の該処方物を４個の50m lポリプロピレン遠心管に注ぎ込む。次いで、該遠心管に栓をし、10分間遠心処 理する（印加した遠心力は第１表に与えた）。次いで、５mlの自動ピペッターま たは真空吸引を利用して、各45mlの該PVA溶液から、各微小球ペレットを得る。 次いで５mlの蒸留水を、各遠心管に添加し、これを攪乱させて、該微小球を再 懸濁させる。これら４種の微小球懸濁液を、次に20mlの蒸留水と共に１本の遠心 管にプールし、更に10分間（遠心力は第１表に与えた）遠心する。この工程を更 に２回繰り返し、全体として３回洗浄する。次に、該微小球を最終的な遠心処理 に付し、10mlの蒸留水に再懸濁する。この最後の洗浄の後、該微小球処方物を、 予め秤量したガラスシンチレーションバイアルに移す。このバイアルに栓をし、 室温（25℃）にて一夜放置して、重力下で該微小球を沈降させる。サイズ範囲0. 1〜３μｍに入る微小球は重力の作用下で沈降しない。従って、これらは10mlの 懸濁液中に残される。D．10〜30μｍまたは30〜100μｍの径をもつ微小球の乾燥 該微小球を室温にて一夜放置した後、５mlの自動ピペッターまたは真空吸引を 利用して、上澄を除去して、沈降した微小球を回収する。この微小球を、１週間 あるいはこれらが完全に乾燥する（バイアルが一定重量となるまで）まで、引出 し中で、栓をしない状態で乾燥させる。ヒュームフード中で、緩慢な窒素ガス流 の下で（流量約10ml／分）、栓をしてない該バイアルを放置することによりより 迅速な乾燥を達成できる。完全に乾燥させた（バイアルは一定重量となる）後、 該バイアルを秤量して、栓をする。ラベルを張り、栓をしたバイアルを室温にて 引出し中で保存する。微小球は通常３カ月程度保存する。E.径0.1〜３μｍの微小球の乾燥 このサイズ範囲の微小球は沈降しないので、４℃にて最長４週間懸濁状態に保 たれる。10mlの該懸濁液の濃度を測定するために、該懸濁液200μｌのサンプル をピペットで1.5mlの予め秤量した小型遠心管に取る。この管を、次いで10,000 ｇ（エッペンドルフ(Eppendorf)テーブルトップマイクロ遠心機）にて遠心処理 し、上澄を除去し、50℃にて一夜乾燥させる。次いで、この管を再度秤量して、 該管内の乾燥した微小球の重量を測定する。F．タキソール担持微小球の製造 タキソール含有微小球を調製するために、適量の秤量したタキソール（封入す べきタキソールの割合に基づき決定）を、直接20mlのガラスシンチレーションバ イアルに入れる。次に、10mlの適当なポリマー溶液を、このタキソールを含有す る該バイアルに添加し、これを次に、タキソールが溶解するまで攪乱する。 かくして、タキソール含有微小球は、本質的に上記の工程(C)〜(E)に従って製 造できる。実施例９：ステント被膜の製造 以下の実験で使用する試薬および装置は、種々の製造元から市販品として入手 できる医学的等級のステント、例えば「ストレッカー(Strecker)」ステント）お よび支持装置、キャップ（プラスチック挿入型）を備えた20mlのガラスシンチレ ーションバイアル、TLCアトマイザー、窒素ガスタンク、ガラス試験管（１ml異 常の種々のサイズのもの）、ガラスビーカー（種々のサイズのもの）、パスツー ル(Pasteur)ピペット、ピンセット、ポリカプロラクトン(“PCL”，分子量10,00 0〜20,000，ポリサイエンスズ(Polysciences))、タキソール(シグマケミカル社( Sigma Chemical Co.)，セントルイス、Mo，純度95%)、エチレンビニルアセテー ト(“EVA”，洗浄したもの、前の説明参照)、ポリ(DL)乳酸(“PLA”，分子量15, 000〜25,000，ポリサイエンスズ)、ジクロロメタン(“DCM”-HPLC等級、フィッ シャーサイエンティフィック(Fisher Scientific))を包含する。A．ステントの噴霧塗装法 以下に長さ約３cmのステントを備え、クリンプをもつ径３mmの挟み込み金属ワ イヤーを使用した典型的な方法を説明する。大きな径のステントに対しては、大 容量のポリマー／薬物溶液を使用する。 十分な量のポリマーを直接20mlのガラスシンチレーションバイアルに量り取り 、十分なDCMを添加して、2%w/vの溶液を得る。該バイアルに栓をして、該溶液を 混合して、該ポリマーを溶解（手動で振盪する）する。このステントを縦方向に 組み立てる。これは、一片のナイロンを使用し、かつ該ステントをレトルトスタ ンドに結び付けることにより達成できる。適当な支持体（例えば、転倒させた20 00mlのガラスビーカー）上で、ヒュームフードフロアの６〜12インチ上方に、該 ステントを支持装置に配置させ、水平噴霧を可能とする。自動ピペットを使用し て、適当な容量（最低５ml）の2%ポリマー溶液を20mlのガラスシンチレーション バイアルに移す。該溶液に適当な量のタキソールを添加し、栓をした該バイアル を手動で振盪して、これを溶解する。 噴霧のために、該バイアルの栓を取り外し、TLCアトマイザーのバーレル（の み）を該ポリマー溶液に浸漬する。この方法では該アトマイザーの溜めを使用す る必要がないことに注意すべきである。即ち、該20mlのガラスバイアルが溜めと して機能する。窒素タンクを該アトマイザーのガス導入口に接続する。霧化およ び噴霧が開始するまで、圧を徐々に高める。圧力を記録し、その圧をこの手順中 ずっと使用する。該ステントを噴霧塗装するために、５秒間の振動噴霧と噴霧操 作間の15秒間の乾燥時間とを使用する。５回の噴霧後、該ステントを90°回転し 、該ステントのその部分を噴霧塗装する。該ステントの全ての側が噴霧塗装され るまでこの操作を繰り返す。該乾燥時間中、該ガス導入ラインを指で締め該噴霧 の浪費を防止する。この噴霧を、適当量のポリマーが該ステント上に堆積するま で継続する。この量はインビボでの特定のステントの用途に応じて変えることが できる。該量を決定するために、噴霧が完了し、該ステントが乾燥された後に、 該ステントを秤量する。最終重量から、該ステントの元の重量を差引けば、これ により該ステントに適用されたポリマー（＋タキソール）の量が得られる。この 被覆ステントを密封容器内で保存する。B．ステントの浸漬手順 以下に長さ約３cmのステントを備え、クリンプをもつ径３mmの挟み込み金属ワ イヤーを使用した典型的な方法を説明する。大きな径のステントに対しては、大 容量のポリマー／薬物溶液を使用する。 ２ｇのEVAを20mlのガラスシンチレーションバイアルに量り取り、20mlのDCMを 添加する。該バイアルに栓をし、２時間放置して、溶解する（該バイアルを手動 で振盪して、該溶解工程を補佐する）。既知の重量のタキソールを直接１mlのガ ラス試験管に量り取り、0.5mlの該ポリマー溶液を添加する。ガラスパスツー ルピペットを使用して、該溶液の穏やかなポンピングによりタキソールを溶解す る。一旦タキソールが溶解したら、該試験管をほぼ水平位置に維持する（粘着性 のポリマー溶液は流出することはない）。ピンセットを使用して、該ステントを 該管の底部まで完全に挿入する。該ポリマー溶液を、該管の口を水平以下の角度 にし、次いで該試験管を水平よりも僅かに大きな角度に戻すことにより、該管の 殆ど口まで流動させる。該管内のステントをゆっくり回転させながら、該ステン トを徐々に取り出す（約30秒）。 該ステントを垂直位置に維持して、乾燥する。閉じた孔の幾つかが弾け（ポッ ピング）て、ポリマーの連続シートに孔を開ける可能性がある。これは、前の浸 漬操作を繰り返すことにより修復できるが、該手順の繰り返しは、更なるポッピ ングを生じ、一般的には不均一なポリマーの生成をもたらす可能性がある。一般 的に、該ステントを只１回浸漬するのがよく、ポッピングによる孔のないステン ト部分を切り取ることが好ましい。この浸漬処理したステントを封止した容器内 に保存する。実施例10：外科用「ペースト」の製造 上記の如く、本発明は、様々な臨床的状況で使用できる、種々のポリマー−含 有薬物組成物を提供する。例えば、これら組成物は(1)流体として所定のサイト に適用され、かつ特定の温度（例えば、体温）において所定の形状の固体に固化 する「サーモペースト(thermopaste)」として、(2)直接または特定の装置（例え ば内視鏡）を介して所定のサイトに搬送でき、かつ後に固化することにより、こ れが適用された組織に付着する固体となるスプレー（即ち、「ナノスプレー(nan ospray)」）として、(3)直接または特定の装置を介して所定のサイトに適用され 、かつ好ましくはこれが適用されたサイトに付着する、接着性の、積層可能で、 柔軟な血管形成阻害−ポリマーフィルムとして、および(4)適当な担持媒体中に 微小球を分散させた懸濁物からなり、直接または特定の装置を介して所定のサイ トに適用され、かつ該適用されたサイトに微小球の層を残す流体として、製造す ることができる。上記態様各々の代表的な例を以下により詳細に説明する。A．サーモペーストの製造法 以下の実験で使用する試薬および装置は、無菌ガラスシリンジ（１ml）、コー ニングホットプレート／攪拌機、20mlのガラスシンチレーションバイアル、鋳型 （例えば、50μｌのDSCパンまたは50mlの遠心管のキャップの内部部分）、小刀 またはピンセット、ポリカプロラクトン(“PCL”，分子量10,000〜20,000，ポリ サイエンスズ(Polysciences)，ワーリントン、ペンシルバニアUSA)、およびタキ ソール（シグマグレードの純度最低95%）を包含する。 5.00ｇのポリカプロラクトンを直接20mlのガラスシンチレーションバイアルに 量り取る。このバイアルを50mlの水を含有する600mlのビーカーに配置する。該 ビーカーを穏やかに65℃に加熱し、この温度に20分間維持する。これにより該ポ リマーは融解する。65℃にて、既知量のタキソールまたは他の血管形成阻害剤を 該融解ポリマーと十分に混合する。該融解ポリマーを、予め加熱（60℃のオーブ ン）した金型に流し込む。スパチュラを使用して、この流し込みを補佐する。該 金型を冷却させて、該ポリマーを固化する。該ポリマーを小片に切断または破壊 する（約２mm×２mmの寸法）。これらの小片は１mlのガラスシリンジに適合する はずである。該１mlのガラスシリンジからプランジャーを取り外し（先端からキ ャップを取らない）、これを秤上に配置する。該秤を零調節する。 0.5gの該小片を、直接該シリンジの開放端部に量り取る。このガラスシリンジ を上向きに（栓をした先端を下側に）して、65℃（コーニングホットプレート） の水を含有する500mlのビーカー入れ、水がバレルに入らないようにする。この ポリマーはこの装置内で10分以内に完全に溶融する。該ポリマー小片が溶融した ら、該水浴から該バレルを取り出し、これを水平に保ち、キャップを外す。該バ レルにプランジャーを挿入し、該溶融ポリマーを圧縮して、該バレルの先端部で 粘着性の塊とする。該シリンジにキャップをし、室温まで冷却させる。 使用に際しては、該シリンジを60℃に再加熱して、液体として投与し、該液体 は体温まで冷却した際に固化する。B．ナノスプレーの製造法 ナノスプレーは、小さな微小球を塩水中に分散した懸濁液である。該微小球が 極めて小さい場合（即ち、径１μｍ以下）、これらはコロイドを形成し、従って 該懸濁液は重力下で沈降しない。以下でより詳細に説明されるように、0.1〜１ μｍの微小球の懸濁液は、指の作用でポンプ輸送されるエーロゾルとして組織上 に堆積するように作成できる。ナノスプレーを製造するのに使用できる装置およ び材料は、200mlのウォータジャケット付きビーカー（カイマックスまたはパイ レックス）、ハーケの循環型水浴、径２インチのコントローラーおよびオーバー ヘッド攪拌機（４ブレード、プロペラ型ステンレススチール攪拌機、フィッシャ ー製）、500mlのガラスビーカー、ホットプレート／攪拌機（コーニング製）、 ４×50mlのポリプロピレン遠心管（ナルゲン(Nalgene)製）、プラスチック製挿 入式キャップを備えたガラスシンチレーションバイアル、テーブルトップ型遠心 機（ベックマン製）、高速遠心−フロアーモデル（JS 21，ベックマン製）、メ トラー分析天秤(AJ 100，0.1mg)、メトラーディジタルトップ荷重天秤(AE 163， 0.01mg)、自動ピペッター（ギルソン(Gilson)製）、無菌ピペットチップ、ポン プ作用エーロゾル（ファイファーファーマシューティカルズ(Pfeiffer pharmace uticals)、20ml層流フード、ポリカプロラクトン(“PCL”，分子量10,000〜20,0 00，ポリサイエンスズ(Polysciences)、ワーリントン、ペンシルバニア、USA)、 洗浄エチレンビニルアセテート(“EVA”，洗浄したもの、前の説明参照)、ポリ( DL)乳酸(“PLA”，分子量15,000〜25,000，ポリサイエンスズ)、ポリビニルアル コール(“PVA”，分子量124,000〜186,000，99%加水分解、アルドリッチケミカ ル社(Aldrich Chemical Co.)，ミルウォーキー、WI，USA)、ジクロロメタン(“D CM”または「メチレンクロリド」、HPLC等級、フィッシャーサイエンティフィッ ク(Fisher Scientific))、蒸留水、滅菌塩水（ベクトン＆ディッケンソン(Becto n and Dickenson)または等価なもの）を包含する。 1．5%(w/v)ポリマー溶液の調製 調製すべきポリマー溶液に依存して、1.00ｇのPCLまたはPLA、あるいは各0.50 ｇのPLAおよび洗浄したEVAを、20mlのガラスシンチレーションバイアルに直接秤 り取る。メスシリンダーを使用して、20mlのDCMを添加し、該バイアルにしっか りと栓をする。これらのバイアルを室温（25℃）にて１時間あるいは該ポリ マーが溶解するまで（場合によっては、手動で振盪してもよい）放置する。該ポ リマーの溶解は肉眼的検査によって決定できる。即ち、該溶液は透明となるはず である。該溶液の名称およびこれを調製した日付を該バイアルに表示する。この 溶液を室温にて保存し、２週間以内に使用する。2．PVAの3.5%(w/v)母液の調製 この溶液は以下に与えられる手順に従って、あるいは微小球の製造のために調 製した5%(w/v)PVA母液（実施例８）を希釈することにより調製できる。簡単に説 明すれば、17.5ｇのPVAを直接600mlのガラスビーカーに量り取る。蒸留水500ml を添加する。３インチのテフロン被覆した攪拌棒を該ビーカーに入れる。このビ ーカーをカバーガラスで覆い、蒸発による損失を減じる。300mlの水を含む2000m lのガラスビーカー中に、このビーカーを配置する。このPVAを85℃および300rpm にて（コーニング(Corning)ホットプレート／攪拌機）２時間あるいは完全に溶 解するまで攪拌する。該PVAの溶解は肉眼的検査によって決定できる。即ち、該 溶液は透明になるはずである。ピペットを使用して、この溶液をガラス栓付き保 存容器に移し、４℃にて最長２カ月間保存する。この溶液は使用または希釈前に 、室温まで加温すべきである。3．ナノスプレーの製造法 ヒュームフード内に該攪拌装置を配置する。100mlの該3.5%PVA溶液を、200ml のウォータジャケット付きビーカーに入れる。該ハーケ水浴をこのビーカーに接 続し、その内容物を27℃(＋/-1℃)にて10分間平衡化させる。該オーバーヘッド 攪拌機の出発速度を3000rpm(+/-200rpm)に設定する。該オーバーヘッド攪拌機の ブレードを該PVA溶液の半分にまで入れ、該攪拌機を始動する。５mlの自動ピペ ッターを使用して、２分間に渡り、10mlのポリマー溶液（製造すべきナノスプレ ーの型に応じてこのポリマー溶液を使用する）を該攪拌されたPVA溶液に滴下す る。３分後に、攪拌速度を2500rpm(+/-200rpm)に調節し、該アセンブリーを2.5 時間そのまま維持する。2.5時間後に、該ナノスプレー処方物から該攪拌ブレー ドを除去し、10mlの蒸留水で洗浄する。該洗液は該ナノスプレー処方物に入る ようにする。 この微小球処方物を500mlのビーカーに注ぎ込む。ジャケット付き水浴を70ml の蒸留水で洗浄する。この70mlの洗液を該微小球処方物に入るようにする。この 180mlの微小球処方物をガラス棒で攪拌し、等量の該処方物を４つのポリプロピ レン製の50ml遠心管に注ぎ込む。該管に栓をする。該栓をした管を10000g(+/-10 00g)にて10分間遠心処理する。５mlの自動ピペットまたは真空吸引を利用して、 微小球ペレットから45mlの該PVA溶液を抜き出し、捨てる。各遠心管に５mlの蒸 留水を添加し、攪乱して各遠心管中の該微小球を再懸濁させる。20mlの蒸留水を 使用して、１本の遠心管に該４つの微小球懸濁液をプールする。該微小球を洗浄 するために、このナノスプレー処方物を10分間、10000g(+/-1000g)にて遠心処理 する。該微小球ペレットから上澄を抜き取る。40mlの蒸留水を添加し、攪乱を使 用して、該微小球を再懸濁させる。この手順を更に２回繰り返して、全体で３回 洗浄する。４回目の洗浄を実施するが、該微小球を再懸濁する際に、（40mlでは なく）10mlの蒸留水を使用する。この４回目の洗浄後、該微小球処方物を予め洗 浄したガラスシンチレーションバイアルに移す。 該バイアルにキャップをし、室温（25℃）にて１時間放置し、重力作用下で径 ２〜３μｍの微小球を沈降させる。１時間後、５mlの自動ピペットを使用して、 懸濁液の上部９mlを抜き出す。この９mlを、無菌的にキャップした50mlの遠心管 に入れる。この懸濁液を10分間、10000g(+/-1000g)にて遠心処理する。上澄を捨 て、ペレットを20mlの無菌塩水中に再懸濁させる。この懸濁液を10分間、10000g (+/-1000g)にて遠心処理する。上澄を捨て、ペレットを無菌塩水中に再懸濁させ る。使用する塩水の特性は、最終的に必要とされる懸濁液濃度(通常10% w/v)に 依存して変化する。無菌塩水中で該エーロゾル装置を十分に洗浄し、該ナノスプ レー懸濁液を該エーロゾル装置に添加する。C．タキソール担持ナノスプレーの製造 タキソールを含有するナノスプレーを製造するために、タキソール(シグマグ レード、純度95%)を使用する。このポリマー薬物母液を調製するために、適当な 量のタキソールを、直接20mlのガラスシンチレーションバイアルに量り取る。こ の適当な量は、該ナノスプレー中に存在させるべきタキソールの割合に基いて決 定される。例えば、5%のタキソールを含有するナノスプレーが必要な場合、秤量 すべきタキソールの量は25mgである。というのは、添加されるポリマーの量が該 ポリマーの5%DCM溶液10ml（次の工程を参照）であるからである。 適当な5%ポリマー溶液10mlを、タキソールを含有する該バイアルに添加する。 該バイアルに栓をし、攪乱または手動で掻き混ぜて、該タキソールを溶解させる （タキソールが溶解したかは、肉眼で検査する）。これを製造した日付を該バイ アルにラベル表示する。これは、製造日に使用すべきである。 ポリマー／薬物（例えば、タキソール）母液を上記のポリマー溶液に代える以 外は、上記手順に従う。D．フィルムの製造手順 ここで、用語「フィルム」とは、多数の幾何的形状の一つに形成したポリマー を意味する。このフィルムは、薄い弾性のポリマーシート、または厚み２mmのポ リマー円板であり得る。このフィルムは、露出した組織上に配置して、該組織サ イトにおいて、長期間に渡り、該ポリマーから任意の封入された薬物を放出させ るように設計される。フィルムは、例えば注型および吹付成形を包含する幾つか の方法によって作成できる。 該注型法において、ポリマーは溶融され、型に注ぎ込むか、あるいはジクロロ メタンに溶解し、次いで型に注ぎ込まれる。次いで、該ポリマーは冷却に伴って 固化するか、あるいは溶媒の蒸発に伴って固化する。該吹付成形法において、該 ポリマーは溶媒に溶解され、ガラス上に吹き付けられ、該溶媒の蒸発に伴って、 該ポリマーは該ガラス上で固化する。吹き付けを繰り返すことにより、該ポリマ ーを該ガラスから剥ぎ取ることの可能なフィルムとすることができる。 これらの実験で使用される試薬および装置は、小型ビーカー、コーニングホッ トプレート攪拌機、注型用金型（例えば、50ml遠心管のキャップ）および金型支 持装置、キャップ（プラスチック挿入型）を備えた20mlのガラスシンチレーショ ンバイアル、TLCアトマイザー、窒素ガスタンク、ポリカプロラクトン(“PCL” ，分子量10,000〜20,000，ポリサイエンスズ(Polysciences))、タキソール(シグ マ、純度95%)、エタノール、「洗浄」（前の説明参照）エチレンビニルアセテー ト(“EVA”)、ポリ(DL)乳酸(“PLA”，分子量15,000〜25,000，ポリサイエンス ズ)、ジクロロメタン(“DCM”、HPLC等級、フィッシャーサイエンティフィック( Fisher Scientific))を包含する。1．フィルムの製法−メルト注型法 既知量のPCLを直接小型ガラスビーカーに量りとる。該ビーカーを水を含有す る大型のビーカー（水浴として機能する）に入れ、これを70℃にて15分間、また は該ポリマーが完全に溶融するまで、ホットプレート上に置く。既知量の薬物を 該溶融ポリマー上に添加し、この混合物を十分に攪拌する。該溶融PCL中への該 薬物の分散を補助するために、該薬物を少量（該溶融PCLの体積の〈10%）の100% エタノール中に懸濁／溶解することができる。次いで、このエタノール懸濁液を 該溶融ポリマー中に混合する。この溶融ポリマーを金型中に注ぎ込み、冷却させ る。冷却後、該フィルムを容器内で保存する。2．フィルムの製造手順−溶媒注型法 既知量のPCLを直接20mlのガラスシンチレーションバイアルに量りとり、十分 なDCMを添加して、10%w/v溶液を得る。該バイアルにキャップをし、該溶液を混 合する。十分なタキソールを添加し、タキソールの所定の最終濃度を達成する。 手動で振盪しまたは攪乱させて、該タキソールを該溶液中に溶解する。該溶液を １時間放置し（気泡の存在を最小化する）、次いでゆっくりと該溶液を金型に注 ぎ込む。この使用する金型は必要な形状に依存する。該金型をヒュームフード中 で一夜放置する。これによりDCMは蒸発するであろう。該フィルムを該金型中に 放置もしくは保存するか、あるいはこれを剥ぎ取って、密封した容器内で保存す る。3．フィルムの製造手順−吹付成形法 十分量のポリマーを直接20mlのガラスシンチレーションバイアルに量り取り、 十分なDCMを添加して、２%w/v溶液を得る。該バイアルにキャップをし、該溶液 を混合して、該ポリマーを溶解する（手動の振盪）。ヒュームフード中で、適当 な金型支持装置を使用して、垂直方向に該金型を組み立てる。適当な支持体（例 えば、転倒させた2000mlのガラスビーカー）上で、該ヒュームフードフロアの上 方６〜12インチの位置にこの金型支持装置を配置する。自動ピペットを使用して 、該浅のポリマー溶液の適当な体積（最小５ml）を、別の20mlのガラスシンチレ ーションバイアルに移す。該溶液に十分な量のタキソールを添加し、キャップし た該バイアルを手動で振盪して、タキソールを溶解させる。吹付成形のために、 該バイアルのキャップを外し、該ポリマー溶液に、TLCアトマイザーのバレル（ のみ）を浸漬する。注：該アトマイザーの溜めは、この手順では使用しない。と いうのは、該20mlのバイアルが溜めとして機能するからである。 該窒素ガスタンクを、該アトマイザーのガス導入口に接続する。霧化および吹 き付けが開始されるまで、圧力を徐々に高める。この圧を記録し、この手順中ず っとこの圧を使用する。該金型に吹き付けするために、５秒間の振動吹き付けと 、該吹き付け操作間に15秒間の乾燥時間をとる。該乾燥時間中に、該ガス供給ラ インを指で締めて該吹き付けの浪費を回避する。吹き付けは、該金型上に適当な 厚みのポリマーが堆積するまで継続する。この厚みは要求に応じて決められる。 吹き付けられたフィルムを該金型に付着したまま、密封した容器内で保存する。E．ナノペーストの製造手順 ナノペーストは、親水性のゲル中に懸濁した微小球の懸濁物である。本発明の 一局面においては、該ゲルまたはペーストは、ターゲット組織近傍に、薬物を担 持する微小球を配置する方法として、該組織上に塗り付けることができる。水性 ペーストである場合、該ペーストは直ぐに体液で希釈されて、該ペーストの粘着 性が減少し、該微小球を隣接組織上に堆積する傾向をもつ。微小球に封入された 薬物のプールは、かくしてターゲット組織近傍に配置される。 これらの実験で使用した試薬および装置は、ガラスビーカー、カルボポール(C arbopol)925(医薬等級、グッドイヤーケミカル社(Goodyear Chemical Co.))、蒸 留水、水酸化ナトリウム水性溶液(1M)、水酸化ナトリウム水性溶液(5M)および20 %w/vの0.1〜３μｍの粒径範囲の微小球の水性懸濁液（上記説明参照）を包含 する。1．5%w/vカルボポールゲルの調製 十分な量のカルボポールを1Mの水酸化ナトリウムに添加して、5%w/v溶液を得 る。カルボポールを1Mの水酸化ナトリウムに溶解するために、該混合物を約１時 間放置する。この期間中、ガラス棒を使用して、該混合物を攪拌する。１時間後 に、該混合物のpHを測定する。低pHは、カルボポールが十分に溶解していないこ とを示す。達成したいpHが7.4である場合、該pHを調節するのに5Mの水酸化ナト リウム溶液を使用する。これは、5Mの水酸化ナトリウム溶液を該混合物に徐々に 滴下し、該混合物を攪拌し、その混合物のpHを測定することにより達成される。 pHを7.4に調節するのに、通常約１時間を要する。一旦pH7.4が達成されたら、該 ゲルにカバーを被せ、２〜３時間放置する。この期間の経過後、pHが依然として 7.4にあることを確認するために、pHを検査する。pHが変化した場合には、再度5 M水酸化ナトリウム溶液を使用して、pHを7.4に調節する。このゲルを数時間放置 して、pHが7.4で安定であることを確認する。所定のpHが達成され、かつ安定す るまで、この操作を繰り返す。該ゲルの名称およびその製造日を、容器のラベル に表示する。次の週迄に、このゲルをナノペーストの製造に使用する。2．ナノペーストの製造手順 十分な量の0.1〜３μｍの微小球を水に添加して、20%の微小球懸濁液を生成す る。８mlの5%w/vカルボポールゲル８mlをガラスビーカーに入れる。２mlの該20% 微小球懸濁液を該ビーカーに添加する。ガラス棒または混合スパチュラを使用し て、該混合物を攪拌して、該微小球を該ゲル全体に十分に分散させる。この操作 は通常30分要する。一旦該微小球が該ゲル内に分散したら、この混合物を保存ジ ャー中に入れる。このジャーを４℃にて保存する。これは１カ月の期間内に使用 すべきである。実施例11：エチレン酢酸ビニルコポリマーとポリ(D,L乳酸)とのブレンドで作 られた微小球からのタキソールの制御された放出、CAMアッセイで の微小球のインビボ試験 この実施例は生分解性ポリ(d,1-乳酸)(PLA)ポリマーと非−生分解性エチレン −酢酸ビニル(EVA)コポリマーとのブレンドから作られたタキソール担持微小球 の調製について説明する。更に、CAM上に配置された該微小球からのタキソール インビトロ放出速度およびタキソール放出の抗−血管形成活性を証明する。 これら実験で使用した試薬はタキソール（これはシグマケミカル社(Sigma Che mical Co.)（セントルイス，MO）から購入した）、PLA(分子量124,000 186,000 ，99%加水分解、アルドリッチケミカル社(Aldrich Chemical Co.)（ミルウォー キー，WI）から購入した)およびジクロロメタン(HPLC等級、フィッシャーサイエ ンティフィック社(Fisher Scientific Co.)から購入)を含む。全体を通して蒸留 水を使用する。A．微小球の調製 溶媒蒸発法を使用して、本質的に実施例８に記載の如くして、微小球を調製す る。簡単に説明すれば、20mlのDCM中の5%w/vポリマー溶液を、EVA:PLAの35:65〜 90:10の範囲のブレンドを使用して調製する。20mlのガラスバイアル中の、2.5%w /v PVA溶液5mlに、１mlの該ポリマー溶液を攪拌しつつ滴下する。６本の同様な バイアルを、溶解試験装置（ファンデルキャンプ(Vanderkamp)）のオーバーヘッ ド攪拌機の６個の位置で組み立て、200rpmで攪拌する。該バイアルの温度を室温 から40℃に、15分かけて高め、40℃にて２時間維持する。バイアルを500xｇにて 遠心処理し、該微小球を水中で３回洗浄する。幾つかのEVA:PLAポリマーブレン ドにおいて、分散または乳化剤PVAの除去のために、該微小球サンプルは該洗浄 段階中に凝集した。この凝集作用は、半−定量的に分析できた。というのは、凝 集した微小球が融合し、該融合したポリマーの塊が洗浄水の表面上に浮遊したか らである。この表面ポリマー層を、該洗浄処理中に捨て、残りのペレット化した 微小球を秤量する。％凝集率は以下の式に基づき決定される： ％凝集率＝[１-（ペレット化微小球の重量）×100]/(初期ポリマー重量) タキソールを担持させた微小球(0.6%w/wタキソール)は、該タキソールをDCM 5 %w/vポリマー溶液中に溶解することにより調製される。使用したこのポリマー ブレンドは50:50 EVA:PLAである。微小球の「大きな」粒径画分および「小さな 」粒径画分を、それぞれ2.5%w/vPVAおよび5%w/vPVAに該タキソール／ポリマー溶 液を滴下することにより製造する。これら分散液を40℃、200rpmにて２時間攪拌 し、遠心処理し、上記のように水で３回洗浄する。微小球を風乾し、ステージマ イクロメータを備えた光学顕微鏡を使用して、該サンプルの粒度を測定する。サ ンプル当たり300を越える微小球が計数される。コントロール微小球（タキソー ルを含まない）を調製し、上記のように粒度決定する。B．封入効率 既知重量のタキソール担持微小球を１mlのDCM中に溶解し、50℃の40%アセトニ トリル水溶液20mlを添加し、該DCMが蒸発するまで攪乱する。該40%アセトニトリ ル中のタキソール濃度を、移動相として水：メタノール：アセトニトリル(37:5: 58)を流量１ml／分で使用し（ベックマンアイソクラチック(isocratic)ポンプ） 、C8逆相カラム（ベックマン）および232nmのUV検出器を使用した、HPLCにより 測定する。この抽出手順の回収率を決定するために、100-1000μｇの既知量のタ キソールを１mlのDCM中に溶解し、上記と同様な抽出手順を３回行う。回収率は 、常に85%を越え、封入効率の値を適当に補正する。C．薬物放出の研究 スクリュー式キャップを備えた15mlガラス管に10mlの10mMリン酸緩衝塩水(PBS ; pH7.4)および35mgのタキソールを担持した微小球を入れる。この管を、37℃に て所定の時間間隔でタンブリング処理し、1500xgにて５分間遠心処理し、得られ る上澄を分析の目的で保存する。微小球ペレットを、37℃にて新たなPBS(10ml) 中に再懸濁し、再度インキュベートする。タキソールの濃度は、１mlのDCMに抽 出し、次いで窒素気流下で蒸発乾固し、１mlの40%アセトニトリル水性溶液中に 再分散し、上記と同様にHPLCで分析する。D．走査型電子顕微鏡(SEM)観察 サンプルホルダーに微小球を配置し、金でスパッター被覆し、15kVで稼働する フィリップス(Philips)の501BSEMを使用して顕微鏡写真を撮影する。E．CAM研究 受精した家禽の胚を、殻を含まない培養の前に、４日間インキュベートする。 この卵の内容物を90%相対湿度および3%CO2にて２日間インキュベートする。イン キュベーションの６日目に、0.6%のタキソールを担持したまたはコントロール（ タキソールを含まない）微小球のアリコート１mgを、直接CAM表面上に配置する 。２日間の放置後、ビデオカメラと連動する立体顕微鏡を使用してその血管形成 を検査し、該ビデオ信号をコンピュータ上に表示し、かつビデオ撮影する。F．結果 100% EVAから調製した微小球をPVA溶液に遊離状態で懸濁させたが、後の水洗 の際に、PVAの除去のために強く凝集、凝結もしくは融合する。EVAを増大する量 のPLAとブレンドすると、第15A図に示した如く、水で洗浄した場合に凝集、凝結 を生する傾向の小さい微小球が生成される。50:50 EVA:PLAブレンドは良好な物 理的安定性をもつ微小球を形成した。即ち、該微小球は分離状態で良好に懸濁し ており、無視可能な程度の凝集、凝結を示すに過ぎなかった。 「小さな」粒径の微小球画分の粒径範囲は、該微小球サンプルの〉95%（重量 基準）について10〜30mmであり、また「大きな」粒径の微小球画分の粒径範囲は 、該微小球サンプルの〉95%（重量基準）について30〜100mmである。該「小さな 」および「大きな」粒径範囲におけるタキソールを担持した50:50 EVA:PLA微小 球の代表的な走査型電子顕微鏡写真を、それぞれ第15Ｂおよび15Ｃ図に示した。 該微小球は滑らかな表面をもつ球であり、また該微小球の表面上には固体薬物は 全く存在しない。50:50 EVA:PLA微小球のタキソール担持効率は、ポリマー50mg 当たりタキソール100-1000mgの範囲の初期タキソール濃度において、95-100%で ある。「小さな」および「大きな」微小球に対する封入効率間には有意な差は観 測されない（スチューデントt-テスト；ｐ〈0.05）。 0.6%w/vタキソール担持50:50 EVA:PLA微小球からのタキソールの放出の経時変 化を第15Ｄ図に示した。ここで、白丸は「小さな」粒径の微小球に対するもの であり、黒丸は「大きな」粒径の微小球に対するものである。この放出速度の研 究は３本の試験管中で３回の別々に実施した実験により実施する。放出プロフィ ールは２段階型であり、両粒径範囲の微小球に対して、初期の迅速なタキソール 放出段階または最初の４日間に渡る「バースト」段階を含む。これに引き続き、 より緩慢な放出段階が見られる。「小さな」および「大きな」粒径の微小球の放 出速度の間には何等有意な差は見られない。該微小球の全タキソール含量の10-3 0%が50日以内に放出される。 このタキソールを担持した微小球(0.6%w/v担持)を、CAMアッセイを利用してテ ストし、その結果を第15Ｅ図に示した。このタキソール担持微小球は薬物を十分 に放出して、その周辺の組織中に無血管領域を形成する（第15Ｆ図）。該微小球 （第15Ｅ図および第15Ｆ図の“MS”）の極近傍は、血管が全くない領域（ゾーン １）であり、該微小球から先の領域は、破壊された、非−機能性の毛細血管領域 （ゾーン２）であり、該微小球から約６mm離れた位置において初めて、該毛細血 管は正常に戻る。コントロール微小球（タキソールを含まない）で処理されたCA Mにおいては、正常な毛細血管の網状構造の構築が見られる。議論 動脈の化学的塞栓は侵襲的な外科的技術である。従って、理想的には、タキソ ール等の抗−血管形成性および抗癌剤の化学塞栓処方物は、数カ月程度の長期間 に渡り活性であるのに十分な濃度で、該腫瘍サイトに該薬物を放出すべきである 。EVAは組織適合性非−分解性のポリマーであり、長期間(〉100日)巨大分子を制 御された様式で放出するのに広く利用されている。 EVAは、最初ポリマーマトリックス中に分散されたタキソールを含む微小球を 調製するためのポリマー生体物質として選択される。しかしながら、100% EVAで 調製した微小球は、洗浄段階中に殆ど完全に凝集かつ凝固してしまう。 乳酸およびグリコール酸を主体とするポリマーおよびコポリマーは生理的に不 活性で生体適合性であり、加水分解により分解されて、毒物学的に許容される生 成物を与える。乳酸とグリコール酸とのコポリマーはPLAよりも速い分解速度を 有し、これらコポリマーを使用して作成した薬物担持微小球は、数カ月に及ぶ期 間に渡り、持続的かつ制御された放出を達成するには不適当である。ドリンガー ＆サワン(Dollinger and Sawan)はPLAとEVAとをブレンドした場合、PLAの分解寿 命が、該ブレンド中のEVAの割合の増大に伴って延びることを示した。かれらは 、PLAとEVAとのブレンドが、PLAよりも良好な機械的安定性と、薬物放出速度の 制御性とをもつポリマーマトリックスを与えるはずであることを示唆している。 第15Ａ図は、該EVA:PLAブレンド中のPLAの比率を高めると、該微小球懸濁液の 凝集の程度が減少することを示した。EVA:PLAマトリックス中に50%以下のEVAを 含むブレンドは、水またはPBS中で物理的に安定な微小球懸濁液を生成した。後 の全ての研究では、50:50 EVA:PLAブレンドを選択する。 微小球の種々の粒径範囲の画分を、該水性相中の乳化剤PVAの濃度を変えるこ とにより、調製できた。「小さな」微小球は5%w/vなる高いPVA濃度で生成され、 一方で「大きな」微小球は2.5%w/vにおいて生成される。全ての他の製造変量は 両微小球粒径画分について同一である。乳化剤の高い濃度はより粘稠な水性分散 媒体を与え、該水性相中に乳化されたポリマー／タキソール／DCMの小さな液滴 を、即ちより小さな微小球を与える。該タキソール担持微小球は、該固体微小球 内に封入された有機相に、最初に添加されたタキソールの95-100%を含んでいた 。タキソールの低い水溶性は該ポリマーを含有する該有機相中への好ましい分配 を生じた。 50:50 EVA:PLA微小球からのタキソールの放出速度は非常に低く、担持タキソ ールの15%未満が50日以内に放出される。薬物放出の初期のバースト段階は、該 微小球の表面領域（該微小球の表面近傍）からの薬物の拡散によるものと考えら れる。 非−分解性のポリマーマトリックス、例えばEVAからの薬物の放出メカニズム は、該ポリマーの分散した薬物相を介する水の拡散、該薬物の溶解および該一群 の相互に接続された、流体で満たされた孔を介する溶質の拡散を包含すると考え られる。PLAとEVAとのブレンドは、PLA中のEVA濃度30〜70%の範囲に渡り不混和 性または二相性(bicontinuous)であることが示されている。誘導または遅延期間 後に、37℃にてPBSバッファー中で実施した分解実験において、PLAは加水 分解的に分解され、EVA:PLAポリマーブレンドマトリックスから分解されて、不 活性なスポンジ−状の骨格を放出した。該ブレンドしたマトリックスからのPLA の劣化および分解の該誘導期間および速度は該マトリックス中のPLAの比率およ び工程の履歴に依存するが、40-50日後まではPLAの損失は全くまたは殆どみられ ない。 50:50 EVA:PLA微小球からのPLAの幾分かの分解が、インビトロでの放出速度の 研究（第15Ｃ図）の50日以内に生ずるが、該ポリマーブレンドからの薬物放出の 主なメカニズムは、該ポリマーマトリックス中の孔構造を介する溶質の拡散であ ると考えられる。 この放出速度の研究の結論として、該微小球は残留する薬物の量から分析され る。50日間の微小球サンプルのインキュベーション中に残留するタキソールの割 合についての値は、「大きな」および「小さな」粒径画分の微小球それぞれに対 して、94%+/-9%および89%+/-12%である。 ポリマー１mg当たり６mg(0.6%)を担持した微小球は、ヒヨコ胚のCAM上に配置 した場合に、血管形成に対する強い阻害性を与えた（第15Ｅおよび15Ｆ図）。実施例12：ポリ（ε−カプロラクトン）微小球中へのタキソールの封入、タキ ソール担持微小球によるCAMアッセイに及ぼす血管形成阻害性 本実施例では、ポリ（ε−カプロラクトン）の生分解性微小球からのタキソー ルのインビトロ放出速度プロフィールを評価しおよび該CAM上に配置した際の、 これら微小球から放出されるタキソールの抗−血管形成活性を証明する。 これら実験で使用した試薬は、ポリ(ε−カプロラクトン）(“PCL”;分子量35 ,000〜45,000、ポリサイエンスズ(Polysciences)、ワーリントン、PAから購入し たもの)、ジクロロメタン(“DCM”; カナダのフィッシャーサイエンティフィッ ク社から購入したもの)、ポリビニルアルコール(PVP; 分子量12,00〜18,000、99 %加水分解、ミルウォーキー，Wis.のアルドリッチケミカル社製)およびセイトル イス，MOのシグマケミカル社製のタキソールを包含する。特に述べない限り、全 ての化学薬品および試薬は入手したままで使用する。全体を通じて、蒸留水を使 用する。A．微小球の調製 溶媒蒸発法を使用して、本質的に実施例８に記載のようにして、微小球を調製 する。簡単に説明すれば、5%w/vのタキソールを担持した微小球を、10mgのタキ ソールと190mgのPCLとを、２mlのDCMに溶解し、100mlの1% PVP水性溶液を添加し 、1000rpmにて、25℃で２時間攪拌する。この微小球の懸濁液を1000xgにて10分 間遠心処理し(ベックマン、GPR)、上澄を除去し、得られる微小球を水で３回洗 浄する。この洗浄した微小球を一夜風乾し、室温にて保存する。コントロール微 小球（タキソールを含まない）を上記の如く調製する。1%および2%のタキソール を含有する微小球をも調製する。微小球の粒径を、ステージマイクロメーターを 備えた光学顕微鏡を使用して決定する。B．封入効率 既知量の薬物を担持した微小球（約５mg）を８mlのアセトニトリルに溶解し、 ２mlの蒸留水を添加して、該ポリマーを沈殿させる。この混合物を1000gにて10 分間遠心分離し、封入されたタキソールの量を、232nmにて、UV分光光度計(ヒュ ーレットーパッカード(Helett-Packard)8452Aダイオードアレイスペクトロフォ トメーター(Diode Array Spectrophotometer))で測定された、該上澄の吸光度か ら算出する。C．薬物放出の研究 約10mgのタキソール担持微小球を、スクリューキャップを備えた管中で、20ml の10mMのリン酸緩衝塩水(pH7.4; PBS)中に懸濁させる。これらの管を37℃にて所 定の時間間隔で上下にタンブリングして、19.5mlの上澄を除去（該微小球を底部 に沈降させた後）し、0.45mmのフィルターで濾過し、タキソール分析のために保 存する。各管において、等量のPBSで置換して、この研究を通してシンク状態を 維持する。該濾液を3x1 mlのDCMで抽出し、該DCM抽出液を窒素気流下で蒸発乾固 させ、１mlのアセトニトリル中に再溶解し、移動相として水：メタノール：アセ トニトリル(37:5:58)を１ml／分なる流量で使用（ベックマンアイソクラチ ックポンプ）し、またC8逆相カラム（ベックマン）、およびUV検出器（シマズ(S himadzu)SPD A）を232nmにて使用した、HPLCによって分析する。D．CAM研究 受精した家禽の胚を、殻を含まない培養の前に、４日間インキュベートする。 インキュベーションの６日目に、5%タキソール担持またはコントロール（タキソ ールを含まない）微小球の１mgアリコートを、直接該CAMの表面上に配置する。 ２日間の該微小球への暴露後、ビデオカメラと連動する立体顕微鏡を使用して、 その血管形成について検査し、該ビデオ信号を次にコンピュータ上に表示し、ビ デオ撮影する。E．走査型電子顕微鏡観察 微小球をサンプルホルダー上に配置し、金でスパッタ被覆し、次いで15kVで稼 働するフィリップス501B走査型電子顕微鏡に設置する。F．結果 該微小球サンプルの粒径範囲は30〜100mmであるが、タキソール担持またはコ ントロール微小球バッチ全てにおいて、幾らかの微小球がこの範囲外にあること が分かっている。PCL微小球に対するタキソールの担持効率は、全ての薬物担持 研究について、常に95%を越える。走査型電子顕微鏡観察は、該微小球が全て球 形であり、その多くが粗いまたは多数の孔のある形状であることを示した。該微 小球表面上には、固体状の薬物は存在しないことを示した。 1%、2%および5%担持PCL微小球からのタキソール放出の経時変化を第16Ａ図に 示した。この放出速度プロフィールは二段階型である。全ての薬物担持率におい て、タキソールの初期の迅速な放出または「バースト段階」が観測される。この バースト段階は1%および2%タキソール担持微小球では、１〜２日間に渡り生じ、 また5%担持微小球については３〜４日間に渡り生じる。迅速放出の該初期段階は かなりゆっくりした薬物放出段階を伴う。1%または2%タキソールを含有する微小 球については、21日後には最早薬物の放出は見られない。5%タキリール担持微小 球については、該微小球は21日後にも全薬物含有率の約20%を放出している。 第16Ｂ図は、コントロールPCL微小球で処理したCAMを示し、また第16Ｃ図は5% タキソール担持微小球による処理を示す。該コントロール微小球で処理したCAM は正常な毛細血管網状構造の構築を示す。タキソール-PCL微小球で処理したCAM は顕著な血管の退化および毛細血管網状構造の内領域を示す。G．議論 このタキソール担持微小球製造の溶媒蒸発法は、95-100%という極めて高いタ キソール封入効率を達成した。これはタキソールの低い水に対する溶解性および その疎水特性によるものであり、該特性は該ポリマーを含有する該有機相中への タキソールの分配を有利にする。 タキソールの二段階型放出プロフィールは、生分解性ポリマーマトリックスか らの多くの薬物の典型的な放出パターンである。ポリ（ε−カプロラクトン）は 生理的条件下での加水分解によって分解し得る脂肪族ポリエステルであり、無毒 かつ組織適合性である。PCLの分解は、乳酸およびグリコール酸の広範に研究さ れたポリマーおよびコポリマーの分解に比して著しく遅く、従って長期に及ぶ薬 物放出系の設計に適している。タキソール放出の初期の迅速な段階またはバース ト相は、該微小球の表面領域（該微小球の表面近傍）からの該薬物の拡散性の放 出によるものと考えられている。該放出プロフィールの第二段階における（より 遅い）タキソールの放出は、PCLの劣化または分解によるものとは考えられない 。というのは、インビトロ条件下での水中では、7.5週間なる期間に渡り、PCLの 大幅な重量損失または表面分解は見られないことが、研究によって示されたから である。このタキソール放出の遅い段階は、恐らく該ポリマーマトリックス中の 流体で満たされた孔内の該薬物の溶解および該孔を介する該薬物の拡散によるも のと考えられる。より高いタキソール担持率におけるより高い放出速度は、多分 該ポリマーマトリックス中のより高度の孔の網状構造の結果であると考えられる 。 5%の担持率をもつタキソール担持微小球は、CAM上に配置された場合に、十分 な薬物を放出して、血管形成の強力な阻害をもたらすことが示された。この血管 成長阻害は、第16Ｃ図に示された如く、無血管領域を与える。実施例13：エチレン酢酸ビニルおよび界面活性剤を含む、タキソール担持ポリ マーフィルム 本質的に実施例10に記載のようにして、２つの型のフィルム、即ちタキソールを 担持したEVAフィルムおよびタキソールを担持したEVA/界面活性剤ブレンドフィ ルム（即ち、プルロニック(Pluronic)F127、スパン(Span)80およびプルロニック L101）を調製する。 調べたこれらの界面活性剤は、２種の疎水性界面活性剤（スパン80およびプル ロニックL101）および１種の親水性界面活性剤(プルロニックF127)である。該プ ルロニック界面活性剤はそれ自体ポリマーであり、EVAとブレンドして、その種 々の薬物放出特性を最適化できることから、魅力的な特性を有するものである。 スパン80は低分子であり、該ポリマーマトリックス中にある様式で分散しており 、ブレンドを形成しない。 界面活性剤は、フィルムからのタキソールの放出速度を変調し、かつ該フィル ムの物理的パラメータを最適化する上で有用である。薬物の放出速度を制御でき ることを示す、該界面活性剤をブレンドしたフィルムの一局面は、該化合物が水 中で膨潤する速度およびその程度を変える能力である。水のポリマー−薬物マト リックスへの拡散は、該担体からの薬物の放出にとって臨界的なファクタである 。第17Ｃおよび17Ｄ図は、該ブレンド中の界面活性剤濃度の変動に伴う、該フィ ルムの膨潤度を示す図である。純粋なEVAフィルムは２カ月間に渡り、何等有意 な程度に膨潤しない。しかしながら、該EVAに添加する界面活性剤の濃度を増大 することにより、該化合物の膨潤度を増大でき、また親水性を高めることによっ ても、膨潤度を増大し得る。 これらのフィルムに関する実験結果は以下の第17A-E図に示されている。簡単 に説明すれば、第17Ａ図は、純粋なEVAフィルムからのタキソール放出の経時変 化を示している。第17Ｂ図は、同じフィルムに関する残留薬物の割合を示す。こ れら２つの図から明らかな如く、タキソールの担持量が増大すると（即ち、タキ ソールの重量％が高くなると）、薬物放出速度は増大し、これは予想された濃度 依存性を示している。タキソール担持量が増大すると、該フィルム中に残留する タキソールの割合も増大し、このことはより高い担持率が、長期放出型処方物に とってより魅力的であることを示している。 該フィルムの物理的強度および弾性は第17Ｅ図で評価されている。簡単に説明 すれば、第17Ｅ図は純粋なEVAおよびEVA-界面活性剤ブレンドフィルムについて の、応力／歪曲線を示している。この応力の大雑把な測定は、該フィルムの弾性 が、プルロニックF127の添加によって増大し、また引張強さ（破壊応力）が、プ ルロニックF127の添加によって、濃度に依存して増大することを立証している。 弾性および強度は、該化合物の永続的な変形を生じることなく、特定の臨床的用 途に対して取扱うことのできるフィルムを設計する際に考慮すべき重要な点であ る。 上記のデータは幾つかの界面活性剤添加物の、薬物放出速度を調節し、かつ該 ビヒクルの物性を変える能力を立証している。実施例14：メトキシポリエチレングリコール350(MePEG)をポリ（ε−カプロラ クトン）に配合することによる、ペーストからのタキソールの制御 された放出を達成する処方物の開発 これら実験において使用した試薬および装置はメトキシプロピレングリコール 350(“MePEG”,ユニオンカーバイド社(Union Carbide),ダンバリー、CT)を含む 。MePEGは室温で液体であり、かつ凝固点10〜-5℃を有する。A．MePEG/PCLタキソール含有ペーストの調製 MePEG/PCLペーストは、まず一定量のタキソールをMePEG中に溶解し、次いでこ れを溶融したPCLに配合することにより調製される。この方法の一つの利点はDCM の使用を必要としないことである。B．融点の分析 PCL/MePEGポリマーブレンドの融点は、30〜70℃の範囲の、2.5℃／分なる加熱 速度での走査型示唆熱分析により測定できる。この実験の結果を第18Ａおよび18 Ｂ図に示した。簡単に説明すると、第18Ａ図に示した如く、このポリマーブレ ンドの（熱分析により決定される）融点は、濃度依存的に、MePEGによって減少 する。MePEG濃度の関数としての、該ポリマーブレンドの融点を第18Ａ図に示し た。この低い融点は、また該ポリマーブレンドがメルトから固化するに要する長 い時間を反映している（第18Ｂ図）。30:70 MePEG/PCLブレンドは、PCL単独のも のよりも、流体メルトから固化するのに２倍以上の長い時間を要する。C．脆弱さの測定 MePEGのPCLへの配合は、PCL単独のものと比較して、より脆弱性の低い固体を 生成するように考えられる。このことを定量化する「大雑把」な方法の一つとし て、秤量した針を、PCL中に0%〜30%の範囲のMePEGを含有するポリマーブレンド に、等しい高さから落下させ、次いで該針が該固体中に侵入する距離を測定する 方法がある。この結果を示すグラフを第18C図に示した。各点は４回の測定の平 均+/-S.D．として与えられている。 比較の目的で、パラフィンワックスのサンプルをもテストしたが、該針は該ワ ックス中に距離7.25mm+/-0.3mm侵入した。D．タキソール放出率の測定 ポリマーのペレット(0%、5%、10%または20%のMePEGを含有するPCL)を37℃にて 、リン酸緩衝塩水(PBS，Ph7.4)中でインキュベートし、ポリマー重量における変 化(%)を経時に測定する。第18Ｄ図に示した如く、重量損失量は、該ブレンド中 に元々存在したMePEGの濃度に伴って増大する。この重量損失は、該ポリマーマ トリックスから該インキュベーション流体へのMePEGの放出によるものと考えら れる。このことは、タキソールがMePEG/PCLブレンドから容易に放出されること を示す。というのは、タキソールがPCLに配合される前に、まずMePEG中に溶解す るからである。E．MePEGの変動量の、タキソール放出に及ぼす効果 PCL中に0.8%および20%のMePEGを含有するサーモペーストを作成する。これら に1%のタキソールを担持させる。37℃における、時間の経過に伴う、10mgのペ レットからのタキソールのPBSバッファー中への放出率をHPLCを使用して監視す る。第18Ｅ図に示したように、該処方物中のMePEGの量は、放出されるタキソー ルの量に影響を与えない。F．20% MePEG/PCLブレンドから放出されるタキソールの全量に及ぼす、タキソー ルの量の変化の影響 PCL中に20%のMePEGを含有するサーモペーストを調製し、0.2%〜10%の範囲のタ キソールを担持させる。時間の経過に伴うタキソールの放出を上記のように測定 する。第18Ｆ図に示したように、時間の経過に伴うタキソールの放出量は、タキ ソールの担持量の増大に伴って増大する。しかしながら、放出された全タキソー ルの割合としてプロットすると、その順序は逆転する（第18Ｇ図）。これは、該 ペースト中に残される残留タキソールに関する情報を与え、このデータの外挿が 有効であると仮定すると、タキソールが20% MePEGサーモペーストから放出され るであろう期間に渡る、該量の推定が可能となる。G．種々のMePEG/PCLブレンドの強度解析 CT-40機械強度テスターを使用して、径0.88cmおよび平均の厚み0.560cmをもつ 、固体ポリマー「錠剤」の強度を測定する。このポリマー錠剤は、PCL中に0%、5 %、10%または20%の濃度でMePEGを含有するブレンドである。 このテストの結果を第18Ｈ図に示したが、ここでは引張強さおよび破断時間両 者を、該ブレンド中の%MePEGの関数としてプロットしてある。単一の変数ANOVA は、各群内の錠剤の厚みが異なっていないことを示した。第18Ｈ図から明らかな 如く、PCLへのMePEGの添加は、得られる固体の硬さを減じた。実施例15：インビボでの血管形成に及ぼす、タキソール担持サーモペーストの 効果 受精した家禽の胚を、実施例２に記載のように、殻を含まない培養に付す前に ４日間インキュベートした。この卵の内容物を該殻から取り出し、丸底の無菌ガ ラスボウルに入れ、ペトリ皿のカバーで覆う。 本質的に上記した（実施例10）如く、タキソールを5%、10%および20%(w/v)の 濃度でサーモペーストに配合し、以下の実験で使用する。次いで、乾燥し、切断 したサーモペーストを60℃に加熱し、パラフィルム２枚の間で加圧して、平坦に し、これを冷却させる。６個の胚には20%-タキソール担持サーモペーストを適用 し、また６個の胚にはこのように調製した非担持のサーモペーストを適用した。 各群における１個の胚が死亡し、コントロールおよび処理群各々において５個の 胚は生き残った。 非担持のサーモペーストおよび20%-タキソールを含有するサーモペーストをも 60℃に加熱し、インキュベーションの６日目に、各CAMの成長端上に置いた。各 ２個の胚をこの方法で処理した。 異なる投与法を使用して得た結果に観測可能な差異は見られなかった。このこ とは、適用時点での該ペーストの温度は、この結果におけるファクタではないこ とを示している。 10%のタキソールを含有するサーモペーストを11個のCAMに適用し、また5%のタ キソールを担持するサーモペーストを10個のCAMに適用し、更に非担持サーモペ ーストを他の10個のコントロールCAMに適用した。２日間の暴露（インキュベー ションの８日目）後に、立体顕微鏡を使用して、血管系を検査した。白色不透明 溶液であるリポシン(Liposyn)IIを該CAMに注入して、該血管細部の視認性を高め た。5%タキソール担持ペーストで処理した胚においては、僅かに２匹の動物が血 管形成の最大の阻害を示し、一方で残りの８匹の動物では周辺部にのみ影響が見 られた。10%タキソール担持サーモペースト処置した動物のうち、僅かに２匹の みが最大の阻害を示し、一方で他の９匹の動物では周辺部にのみ影響が見られた 。 20%-タキソール担持サーモペーストは、この処置を受けた５個のCAMの全てに おいて、広い無血管領域を示した（第19Ｂ図参照）。最大の阻害度は、寸法６mm ×６mmの領域を覆う無血管領域として定義した。20%-タキソール担持サーモペー ストで処置した全てのCAMが、この血管形成阻害度を示した。 比較のために、コントロール（非担持）サーモペーストは該CAM上の血管形成 を阻害しなかった（第19Ａ図参照）。この高倍率の視野（該ペーストの端部が該 像の頂部に見られることに注目すべきである）は、該ペースト近傍の血管が該サ ーモペーストによって影響されないことを示している。このことは、観測された 効果がタキソールの持続的な放出によるものであり、該ポリマー自体によるもの でも、また該血管系の発生に及ぼすペーストの二次的な圧力効果によるものでは ないことを示唆している。 この研究は、サーモペーストが十分な量の血管形成阻害剤（この場合はタキソ ール）を放出して、該CAMの血管系の正常な発生を、阻害することを立証してい る。実施例16：インビボでの、腫瘍の成長および腫瘍の血管形成に及ぼすタキソー ル担持サーモペーストの効果 受精した家禽の胚を、その殻を除去する前に、３日間インキュベートする。該 卵の内容物を、エアースペースの回りに位置する該殻を除去し、内部殻膜を分離 し、該殻の反対側の端部に孔を開け、該卵の内容物を穏やかに丸い端部から滑り 出させることにより、取り出す。この内容物は、丸底の無菌ガラスボウルに取り 出し、ペトリ皿のカバーで覆い、相対湿度90%および3%二酸化炭素（実施例２参 照）にてインキュベートする。 MDAY-D2細胞（二十日ネズミのリンパ球様腫）をマウス中に注入し、0.5-1.0g の腫瘍に成長させる。該マウスを殺し、該腫瘍部位をアルコールで拭き、切除し 、無菌組織培養培地に配置し、層流フードの下で１mm片に細断する。この細断し た腫瘍を９日齢のヒヨコ胚上に設置する前に、CAM表面を30ゲージの針で穏やか に引っ掻いて、腫瘍の移植を確実にする。次いで、この腫瘍を、インキュベーシ ョンの８日後に該CAM上に配置し（脱殻の４日後）、４日間該CAM上で成長させて 、血管分布を確立させる。この方法を利用して、４つの胚を調製し、各胚に３つ の腫瘍を適用する。これらの胚について、１つの腫瘍には20%タキソール担持サ ーモペーストを与え、第二の腫瘍には非担持サーモペーストを与え、また第三の 腫瘍には何等処置を施さなかった。この処置は、結果を記録する前に２日間続け る。 この移植したMDAY-D2腫瘍は、該腫瘍塊内における毛細血管（該CAMを由来とす る）の内部成長を誘発する血管形成ファクタを分泌するが、所定のサイズまで 成長させる。該腫瘍の血管全ては該CAMを由来とし、一方全ての腫瘍細胞は該移 植片を由来とするので、これら２つの過程に及ぼす治療処置の効果を独立に評価 することができる。このアッセイを使用して、タキソール担持サーモペーストの (a)該腫瘍の血管形成の阻害および(b)該腫瘍細胞自体の成長の阻害に関する有効 性を決定した。 この研究により、固定された組織の直接的立体顕微鏡評価およびその組織各的 検査は以下のことを立証している。即ち、20%タキソール担持サーモペーストで 処置した腫瘍においては、コントロール腫瘍と比較して、該腫瘍に補給を行う血 管の数における減少（第20Ｃ図および第20Ｄ図参照）、該腫瘍内の血管数の減少 、および該腫瘍の周辺（固形腫瘍においては、典型的に最も高度に血管形成され る領域）における血管数の減少が見られた。この研究を実施した２日間に、該腫 瘍はそのサイズおよび量を減少し始めた。また、多数の内皮細胞の細胞分裂が停 止されているように思われ、このことは内皮細胞の増殖が影響を受けていること を示している。腫瘍細胞は、またしばしば有糸分裂を停止しているように思われ た。４種全ての胚は、20%タキソール担持サーモペーストが腫瘍の血管形成を抑 制し、一方で非担持サーモペーストが何の効果も示さないという一致したパター ンを示した。 比較すると、非担持サーモペーストで処置したCAMにおいては、該腫瘍は十分 に血管形成し、正常な周辺の組織と比較した場合に、血管数およびその密度にお ける増加を示し、タキソール担持ペーストで処置した腫瘍において観測されるよ りも著しく多数の血管が見られる。新たに形成された血管があらゆる角度から該 腫瘍に入り、車輪に取り付けられたスポークスのように見えた（第20Ａおよび20 Ｂ図参照）。コントロール腫瘍は、本研究中ずっと、そのサイズおよび量を増大 し続けた。組織学的には、多数の広がった、壁の薄い毛細血管が該腫瘍の周辺で 観察され、また幾つかの内皮は細胞分裂状態にあることが観察された。この腫瘍 組織は十分に血管形成され、かつ十分に生存性であった。 一例として、同一のCAM上に配置された２つの同様なサイズ（移植時点の初期 ）腫瘍において、以下のデータが得られた。20%タキソール担持サーモペースト で処置した腫瘍については、該腫瘍のサイズは330nm×597nmであるものと測 定され、該腫瘍の極周辺は14個の血管を有しており、一方で該腫瘍塊は僅かに３ 〜４本の小さな毛細血管をもつに過ぎない。非担持サーモペーストで処置した腫 瘍については、該腫瘍のサイズは623nm×678nmであり、該腫瘍の極周辺は54個の 血管を有しており、一方で該腫瘍塊は12〜14本の小さな毛細血管を有している。 更に、回りのCAM自体は、タキソールで処置した腫瘍の回りの領域と比較して、 より多くの血管を含んでいた。 この研究は、サーモペーストが十分な量の血管形成阻害剤（この場合はタキソ ール）を放出して、腫瘍の成長および発生を伴う病理的な血管形成を阻害するこ とを立証している。これらの状況の下で、血管形成は、周辺組織から該腫瘍塊へ の毛細血管の内部成長を誘発することのできる、血管形成ファクタを生産する該 腫瘍細胞によって最大限刺激される。20%タキソール担持サーモペーストはこの 過程を遮断し、該腫瘍組織の、十分な血液供給を維持する能力を制限することが できる。これは、該腫瘍細胞自体に対する細胞毒性作用と、該組織に対して、そ の成長並びに分裂に必要な養分を枯渇させることの両者によって、該腫瘍塊の縮 小を結果する。実施例17：二十日ネズミ腫瘍モデルにおける、インビボでの腫瘍の成長に及ぼ す血管形成阻害剤−担持サーモペーストの効果 二十日ネズミのMDAY-D2腫瘍モデルを使用して、化学療法剤および血管形成阻 害化合物、例えばタキソールの局所的徐放の、腫瘍成長、腫瘍転移、および動物 の生存性に及ぼす効果を調べることができる。このMDAY-D2腫瘍細胞系を、αmem 培地中に5%の子牛血清を含む細胞懸濁液中で成育させる。この細胞を37℃にて5% の二酸化炭素を補充した湿潤雰囲気中でインキュベートし、十分な細胞が得られ るまで、３日毎に15倍に希釈する。このインキュベーション期間の経過後、該細 胞を光顕微鏡により、その生存性について検査し、次いで1500rpmにて５分間遠 心処理する。該細胞にPBSを添加して、１ml当たり1,000,000細胞となるように希 釈する。 10週齢のDBA/2j雌マウスを、その入手後３〜４日間馴化させる。次いで、各マ ウスに、その後方側腹部に、PBS 100ml中の100,000 MDAY-D2細胞を皮下注射す る。以前の研究により、この手順が３〜４日以内に該注射部位に肉眼視可能な腫 瘍を生成し、14日後には1.0-1.7gのサイズに達し、注射後19-25日目に肝臓内に 肉眼視可能な転移を発生することが示された。研究の目的に応じて、この疾患の 進行の任意の時点で治療的介入を実施できる。 上記動物モデルを使用して、20匹のマウスに140,000 MDAY-D2細胞を皮下注射 し、該腫瘍を成長させる。５日目に、該マウスを５つの群に分ける。麻酔下に、 該腫瘍部分を外科的に開いて、局部を該薬物担持サーモペーストまたはコントロ ールサーモペーストで、既存の腫瘍組織を妨害せずに処置し、該傷口を閉じた。 ５つの群に、未処置（単に傷口を閉じる）、ポリマー(PCL)のみ、10%タキソール 担持サーモペーストで処置し、あるいは20%タキソール担持サーモペースト（動 物４匹のみに注射）を該腫瘍部位近傍に移植した。16日目に該マウスを殺し、該 腫瘍を切除し、腫瘍成長、腫瘍転移、該処置に起因する局所的および全身的有害 性、創傷治癒に及ぼす作用、腫瘍血管分布の影響、および該切開部に残留する該 ペーストの状態について検査（全体的にかつ組織学的に）した。 各動物に関する該腫瘍の重量を以下の表に示す。 20%のタキソールを担持するサーモペーストは腫瘍成長を、コントロール動物 (平均重量0.681)と比較して、85%以上(平均重量0.105)だけ減少させた。サーモ ペーストのみまたは10%のタキソールを含有するサーモペーストで処置した動物 は、腫瘍の成長に対して限られた効果のみを有し、腫瘍重量はそれぞれ僅かに10 %および35%だけ減少させた（第21Ａ図）。従って、20%のタキソールを担持する サーモペーストは、10%のタキソールを含有するサーモペーストよりも高い腫瘍 成長阻害効果を示した（第21Ｃ図参照、第21Ｂ図をも参照のこと）。 サーモペーストは、投与部位において幾つかの動物に検出された。0.026g〜0. 078gの範囲の重量の変化するポリマーが、15匹のマウスのうちの８匹中に検出さ れた。20%のタキソールを担持するサーモペーストを含む群における各動物は幾 らかの残留ポリマーを含み、このことは該ポリマーが溶解し難いことを示唆して いる。組織学的に、タキソール担持サーモペーストで処置した腫瘍は低い細胞充 実性を含み、かつコントロール腫瘍よりも多くの組織壊死部を含んでいた。血管 系は減少し、内皮細胞はしばしば細胞分裂を停止しているものと考えられた。該 タキソール担持サーモペーストは、該腫瘍を取り巻く皮膚または組織の保全性ま たは細胞充実性に影響を与えるとは考えられなかった。全体的には、創傷の治癒 は影響されなかった。実施例18：癌切除外科手術中の腫瘍細胞の医原性転移播種の予防における、血 管形成−阻害剤担持外科フィルムの使用 無菌で、柔軟な、伸縮性の薬物−ポリマー化合物は癌切除手術において有用で あるから、切除手術中に悪性疾患組織から正常な周囲の組織を分離して、癌細胞 による不注意な汚染による、該疾患の隣接器官への医原性の拡がりを防止するこ とが望ましい。薬物担持パラフィルムは、該腫瘍の取扱い前に、正常な組織を横 切って拡げることができた。これは、腸癌の切除手術中に、肝臓および他の腹部 内容物の回りに配置すれば、該疾患の肝臓への腹膜組織内での拡がりを防止する 上で最も有用である。生分解性フィルムをその場に残して、継続的な保護を達成 することが可能であった。 切除部位は、また手術後の悪性疾患の再発の一般的な位置でもある。これは外 科手術中の腫瘍細胞による該創傷部位の汚染によるものと考えられる。これらの 問題を検討するために、実験を実施して、血管形成阻害剤−担持フィルムの、こ の現象を防止する能力を調べる。A．材料および方法 外科用フィルムの調製 ：外科用フィルムは、実施例10におけるようにして調製す る。約１cm×１cmのこのフィルムは、ポリマーのみ(PCL)または5%のタキソール を担持するPCLを含有するように調製する。ラット肝腫瘍モデル ：初期の研究では、体重約300gのウイスター(Wistar)ラット を全身麻酔し、中線に沿って３〜５cmの腹部切開を行う。最大の肝葉において、 肝臓の柔組織に１cmの切開を行い、該肝臓端部の一部を切除する。100mlのリン 酸緩衝塩水に懸濁した、１×106の濃度の生きた9L神経膠腫細胞（この手順の直 前に、組織培養物から溶出する）を、30ゲージの針を使用して該切断した肝臓端 部に堆積させる。次いで、外科用フィルムを、該腫瘍細胞を含有する該切断肝臓 端部上に配置し、ジェルフォームで所定の場所に固定する。２匹の動物には5%の タキソールを担持するPCLフィルムを、また他の２匹の動物にはPCLのみを含むフ ィルムを適用した。腹部壁を3.0デキソン(Dexon)と皮膚クリップとで閉じる。全 身麻酔を終了して、該動物を覚醒させる。10日後に、該動物を殺し、その肝臓を 組織学的に検査した。B.結果 ポリマーのみで処置した２個の肝臓には、局部的な腫瘍の成長がみられる。ポ リマー＋タキソールで処置した肝臓両者は、組織学的に検査した場合に、全く腫 瘍を含まなかった。同様に重要なことは、肝臓被膜が再生され、該ポリマーフィ ルム上に完全に成長したことであり、肝臓の切開した表面は、該フィルムが創傷 の治癒に対して有意な効果がないことを示している。該外科用フィルム（薬物− 担持または薬物を含まないフィルム）の何れの回りも、局所的肝毒性を示す証拠 はなかった。C．議論 この研究は、外科手術中の正常な組織および切開部位の回りに配置された外科 用フィルムが、悪性腫瘍の切除中に、正常な周囲の組織への腫瘍細胞の偶発的な 転移の発生率を減じることができることを示している。これは、該疾患の手術後 の局所的再発という重大な問題の発生率を低下するのに役立つ。実施例19：関節炎の治療における、血管形成阻害剤担持生分解性微小球の関節 内注入 関節炎における関節の損傷は炎症（WBCsおよびWBS生成物を含む）とパンヌス 組織発生（新血管組織、接続組織および炎症細胞上の複合組織）との組み合わせ によるものである。初期の研究ではタキソールを選択した。というのは、これが 強力な新血管形成阻害剤であるからである。このようにして、局所的高濃度のタ キソールが関節炎における疾患の改良剤であることが証明されるであろう。 微小球が関節に有害な作用を及ぼすか否かを決定するために、以下の実験を実 施した。簡単に説明すれば、純粋なPCLおよびタキソール担持微小球を前に実施 例８で説明したようにして調製する。 ３匹のラビットに、全体積0.2ml(0.5mgの微小球を含有する)で、0.5-5.0μｍ 、10-30μｍまたは30-80μｍの微小球を関節内注入する。該関節を肉眼（臨床） 的に、毎日評価する。２週間後、該動物を殺し、該関節を炎症の徴候およびプロ テオグリカンの減少について組織学的に検査した。 このラビットを、炎症性関節炎および骨関節炎モデルとして使用して、微小球 の利用による骨膜炎および軟骨劣化の軽減を評価する。変性型関節炎は、膝部の 十字形靭帯および半月の部分的な裂けにより誘発される。４〜６週間後、該ラビ ットは、ヒトの骨関節炎に観測されるのと同様な軟骨の侵食を生じる。炎症性関 節炎は完全フロインドアジュバント(CFA)中の牛血清アルブミン(BSA)によりラビ ットを免疫化することにより誘発される。３週間後に、高力価で抗-BSA抗体を含 むラビットに、BSA(5mg)を関節内注射する。７日目に関節の膨れと顕著な骨膜炎 が現れ、７〜14日目にプロテオグリカンの減少が見られ、また軟骨の侵食が４〜 ６週目に観測される。 炎症性関節炎は上記のようにして誘発される。４日後に、5%のタキソールまた はビヒクルを含有する微小球を注入する。一群の動物を14日後に、またその他の 動物を28日後に殺す。その関節を、炎症および軟骨の減少につき組織学的に検査 する。この実験は、タキソール担持微小球が関節の炎症および軟骨の減少に影響 を与えるか否かを決定するように工夫されている。 血管形成阻害剤担持微小球を、更に骨関節炎モデルにおいて研究する。簡単に 説明すれば、変質性関節炎を上記のようにラビット中に誘発し、４日目に、関節 に微小球（5%のタキソールまたはビヒクルのみ）を関節内注入する。これらの動 物を21日目および42日目に殺し、軟骨劣化の徴候につき該関節を組織学的に調べ る。 軟骨保護剤としての血管形成阻害剤を関節内放出する微小球を評価するために 研究を実施する。結果 種々のサイズ(0.5-5.0μｍ、10-30μｍまたは30-80μm)をもつ非−担持PCL微 小球をラビットの膝関節に関節内注入した。これら実験の結果を第22Ａ〜Ｄ図に 示した。簡単に説明すれば、第22Ａ図はPBSを注入した関節由来の骨膜の写真で ある。第22Ｂ図は微小球を注入した関節の写真である。第22Ｃ図はPBSを注入し た関節由来の軟骨の写真である。また、第22Ｄ図は微小球を注入した関節由来の 軟骨の写真である。 これらの写真から理解されるように、組織学的には、微小球注入関節と注入さ れていない関節との間には違いはみられない。臨床的には、この実験を実施した 14日間には、関節の炎症の徴候は見られなかった。全体的には、未処置の正常な 関節と比較して、微小球を注入した関節中の関節の炎症または軟骨の損傷の徴候 は見られない。結論 微小球は、関節表面に認め得る何の変化を生ずることなく、関節内に注入でき る。このことは、この方法が疾患に罹った関節に、疾患−改善薬を正確に持続的 放出する有効な手段であり、一方でこのような生物学的に活性を化合物の全身的 な投与に関連すると思われる毒性を最小化できることを示している。 上で論じた如く、微小球は、規定された薬物放出速度をもつ、特定のサイズで 処方できる。タキソールが強力な血管形成阻害剤であり、かつCAMアッセイにお いて新血管形成を遮断するのに十分な量で微小球から放出されることも立証され る。従って、血管形成阻害剤担持（例えば、タキソール担持）微小球の関節内投 与は、疾患例えばリュウマチ性関節炎を生じ、該関節における軟骨の破壊に導く 新血管形成を遮断できるはずである。このように、薬物担持微小球は「軟骨保護 剤」として機能し、該薬物は、新血管性パンヌス組織の侵入に起因する不可逆的 な破壊から、軟骨を保護する。 上記説明から、本発明の特定の態様を説明の目的で記載してきたが、本発明の 精神並びに範囲を逸脱することなく、種々の改良が可能であると理解すべきであ る。従って、本発明は添付した請求の範囲によってのみ限定される。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ Ａ６１Ｋ 38/55 7433−4Ｃ Ａ６１Ｋ 47/32 Ｂ 47/32 7433−4Ｃ 47/34 Ｂ 47/34 7019−4Ｃ Ａ６１Ｌ 31/00 Ｚ Ａ６１Ｌ 31/00 7329−4Ｃ Ｃ０７Ｄ 305/14 Ｃ０７Ｄ 305/14 9051−4Ｃ Ａ６１Ｋ 37/64 (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，Ｍ Ｃ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ， ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ)，ＡＭ，ＡＴ， ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，Ｃ Ｚ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＴ，ＬＵ， ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＬ，ＮＯ，ＮＺ，Ｐ Ｌ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (71)出願人 ザ ユニヴァーシティ オブ ブリティッ シュ コロンビア カナダ ブリティッシュ コロンビア ヴ ィ６ティー １ゼット３ ヴァンクーヴァ ー ヘルス サイエンシーズ モール ア イアールシー331‐2194 (72)発明者 バート ヘレン エム カナダ ブリティッシュ コロンビア ヴ ィ５ダブリュー １エル８ ヴァンクーヴ ァー イースト フォーティース アベニ ュー 240 (72)発明者 ハンター ウィリアム エル カナダ ブリティッシュ コロンビア ヴ ィ５ケイ ３エル７ ヴァンクーヴァー ノース ペンティクトン ストリート 525 (72)発明者 マーチャン リンジー エス カナダ ブリティッシュ コロンビア ヴ ィ６ケイ １エイ１ ヴァンクーヴァー ポイントグレイ ロード 2529ビー (72)発明者 アーゼノールト エイ ラリー カナダ オンタリオ エヌ３エル ３イー １ パリ アールアール１ (72)発明者 ジャクソン ジョン ケイ カナダ ブリティッシュ コロンビア ヴ ィ６エヌ ２エイチエヌ ヴァンクーヴァ ー ウェスト サーティーサード アベニ ュー 4001

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 １．(a) 抗−血管形成ファクタと、 (b) ポリマー担体と、 を含む組成物。 ２．該抗−血管形成ファクタが抗−浸潤ファクタである請求の範囲第１項に記載 の組成物。 ３．該抗−血管形成ファクタがレチノイン酸およびその誘導体である請求の範囲 第１項に記載の組成物。 ４．該抗−血管形成ファクタがスラミン、メタロプロテイナーゼ-1の組織阻害剤 、メタロプロテイナーゼ-2の組織阻害剤、プラスミノーゲンアクチベータインヒ ビター-1およびプラスミノーゲンアクチベータインヒビター-2からなる群から選 ばれる請求の範囲第１項に記載の組成物。 ５．(a) タキソールと、 (b) ポリマー担体と、 を含む組成物。 ６．該組成物が0.1〜200μｍの範囲の平均粒径を有する微小球に形成されている 、請求の範囲第１〜５項の何れか１項に記載の組成物。 ７．該組成物が100μｍ〜２mmの範囲の厚みをもつフィルムに形成されている、 請求の範囲第１〜５項の何れか１項に記載の組成物。 ８．該組成物が45℃以上において液体であり、かつ37℃において固体または半− 固体である、請求の範囲第１〜５項の何れか１項に記載の組成物。 ９．該ポリマー担体が40%の酢酸ビニルで架橋されたポリ（エチレン−酢酸ビニ ル）である、請求の範囲第１〜５項の何れか１項に記載の組成物。 10．該ポリマー担体がポリ（乳酸−コ−グリコール酸）である、請求の範囲第１ 〜５項の何れか１項に記載の組成物。 11．該ポリマー担体がポリカプロラクトンである、請求の範囲第１〜５項の何れ か１項に記載の組成物。 12．該ポリマー担体がポリ乳酸である、請求の範囲第１〜５項の何れか１項に記 載の組成物。 13．該ポリマー担体が40%の酢酸ビニルで架橋されたポリ（エチレン−酢酸ビニ ル）と、ポリ乳酸とのコポリマーである、請求の範囲第１〜５項の何れか１項に 記載の組成物。 14．該ポリマー担体がポリ乳酸とポリカプロラクトンとのコポリマーである、請 求の範囲第１〜５項の何れか１項に記載の組成物。 15．血管を塞栓する方法であって、該血管が効果的に塞栓されるように、請求の 範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物を治療上有効な量で該血管内に放出 する工程を含む上記塞栓法。 16．該血管が腫瘍に栄養供給するものである、請求の範囲第13項記載の方法。 17．一般的に管状の構造をもち、その表面が請求の範囲第１〜14項の何れか１項 に記載の組成物で被覆されていることを特徴とするステント。 18．体液通路の内腔を拡張する方法であって、該通路を拡張するように、該通路 にステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち、該 構造の表面が、請求の範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物で被覆されて いることを特徴とする、上記方法。 19．血管障害を排除する方法であって、該血管障害を排除するように、血管管路 に血管ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち 、該構造の表面が、請求の範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物で被覆さ れていることを特徴とする、上記方法。 20．胆管障害を排除する方法であって、該胆管障害を排除するように、胆汁通路 に胆管ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち 、該構造の表面が、請求の範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物で被覆さ れていることを特徴とする、上記方法。 21．尿道障害を排除する方法であって、該尿道障害を排除するように、尿道に尿 道ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち、該 構造の表面が、請求の範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物で被覆されて いることを特徴とする、上記方法。 22．食道障害を排除する方法であって、該食道障害を排除するように、食道に食 道ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち、該 構造の表面が、請求の範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物で被覆されて いることを特徴とする、上記方法。 23．気管／気管支障害を排除する方法であって、該気管／気管支障害を排除する ように、気管または気管支に気管／気管支ステントを挿入する工程を含み、該ス テントが一般的に管状の構造をもち、その表面が、請求の範囲第１〜14項の何れ か１項に記載の組成物で被覆されていることを特徴とする、上記方法。 24．腫瘍切除部位の治療方法であって、該部位における局部的癌の再発および新 血管の形成を阻害するように、該切除に引き続き、腫瘍切除縁部に、請求の範囲 第１〜14項の何れか１項に記載の組成物を投与することを含む、上記方法。 25．該抗−血管形成組成物がサーモペーストである、請求の範囲第24項に記載の 方法。 26．該投与工程が、該腫瘍切除縁部に、抗−血管形成組成物を含むナノ球の組成 物を噴霧することを含む、請求の範囲第24項に記載の方法。 27．角膜新血管形成を治療する方法であって、該血管の形成を阻害するように、 角膜に、請求の範囲第１〜14項の何れか１項に記載の組成物を治療上有効な量で 投与する工程を含む、上記方法。 28．該組成物が、更に局所性コルチコステロイドをも含む、請求の範囲第23項に 記載の方法。 29．非−腫瘍性の血管形成−依存性疾患に罹った患者における血管形成を阻害す る方法であって、該新血管の形成を阻害するように、非−腫瘍性の血管形成−依 存性疾患に罹った患者に、タキソール含有組成物を治療上有効な量で投与するこ とを含む、上記方法。 30．非−腫瘍性の血管形成−依存性疾患における血管を塞栓する方法であって、 該血管が効果的に閉塞されるように、治療上有効な量のタキソール含有組成物を 該血管に放出する工程を含む、上記方法。 31．体液通路の内腔を拡張する方法であって、該通路を拡張するように、該通路 にステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち、該 構造の表面がタキソール含有組成物で被覆されていることを特徴とする、上記方 法。 32．血管障害を排除する方法であって、該血管障害を排除するように、血管管路 に血管ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち 、該構造の表面がタキソール含有組成物で被覆されていることを特徴とする、上 記方法。 33．胆管障害を排除する方法であって、該胆管障害を排除するように、胆汁通路 に胆管ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち 、該構造の表面がタキソール含有組成物で被覆されていることを特徴とする、上 記方法。 34．尿道障害を排除する方法であって、該尿道障害を排除するように、尿道に尿 道ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち、該 構造の表面がタキソール含有組成物で被覆されていることを特徴とする、上記方 法。 35．食道障害を排除する方法であって、該食道障害を排除するように、食道に食 道ステントを挿入する工程を含み、該ステントが一般的に管状の構造をもち、該 構造の表面がタキソール含有組成物で被覆されていることを特徴とする、上記方 法。 36．気管／気管支障害を排除する方法であって、該気管／気管支障害を排除する ように、気管または気管支に気管／気管支ステントを挿入する工程を含み、該ス テントが一般的に管状の構造をもち、該構造の表面がタキソール含有組成物で被 覆されていることを特徴とする、上記方法。 37．腫瘍切除部位を治療する方法であって、該部位における癌の局所的再発およ び新血管形成を阻害するように、該切除に引き続き腫瘍切除縁部に、タキソール 含有組成物を投与する工程を含む、上記方法。 38．角膜新血管形成を治療する方法であって、新血管の形成を阻害するように、 該角膜に、タキソール含有組成物の治療上有効な量を投与することを特徴とする 上記方法。 39．(a) 容器内のタキソールと、 (b) 該容器に付帯する、薬品の製造、使用、または販売を規制する行政機関に より規定された方式での注意書を含み、該注意書は、非−腫瘍形成性の血管形成 −依存性疾患の治療のための、ヒトまたは獣医的投与に関する、該タキソールの 該機関による承認を反映するものである、医薬製品。
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