RU2180844C2 - Стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала - Google Patents

Стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала Download PDF

Info

Publication number
RU2180844C2
RU2180844C2 RU96105391/14A RU96105391A RU2180844C2 RU 2180844 C2 RU2180844 C2 RU 2180844C2 RU 96105391/14 A RU96105391/14 A RU 96105391/14A RU 96105391 A RU96105391 A RU 96105391A RU 2180844 C2 RU2180844 C2 RU 2180844C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
taxol
stent
microspheres
polymer
blood vessels
Prior art date
Application number
RU96105391/14A
Other languages
English (en)
Other versions
RU96105391A (ru
Inventor
Элен М. БАРТ
Уильям Л. ХАНТЕР
Линдсэй С. МЭЧЭН
А. Лэрри АРСЕНО
Джон К. ДЖЕКСОН
Original Assignee
Энджиоджинезис Текнолоджиз Инк.
Дзе Юниверсити оф Бритиш Колумбия
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=22245764&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=RU2180844(C2) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Энджиоджинезис Текнолоджиз Инк., Дзе Юниверсити оф Бритиш Колумбия filed Critical Энджиоджинезис Текнолоджиз Инк.
Publication of RU96105391A publication Critical patent/RU96105391A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2180844C2 publication Critical patent/RU2180844C2/ru

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14—Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/185—Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
    • A61K31/19—Carboxylic acids, e.g. valproic acid
    • A61K31/20—Carboxylic acids, e.g. valproic acid having a carboxyl group bound to a chain of seven or more carbon atoms, e.g. stearic, palmitic, arachidic acids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A61K33/24—Heavy metals; Compounds thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/12—Ketones
    • A61K31/122—Ketones having the oxygen directly attached to a ring, e.g. quinones, vitamin K1, anthralin
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/13—Amines
    • A61K31/135—Amines having aromatic rings, e.g. ketamine, nortriptyline
    • A61K31/136—Amines having aromatic rings, e.g. ketamine, nortriptyline having the amino group directly attached to the aromatic ring, e.g. benzeneamine
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/16—Amides, e.g. hydroxamic acids
    • A61K31/165—Amides, e.g. hydroxamic acids having aromatic rings, e.g. colchicine, atenolol, progabide
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/185—Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/185—Acids; Anhydrides, halides or salts thereof, e.g. sulfur acids, imidic, hydrazonic or hydroximic acids
    • A61K31/19—Carboxylic acids, e.g. valproic acid
    • A61K31/20—Carboxylic acids, e.g. valproic acid having a carboxyl group bound to a chain of seven or more carbon atoms, e.g. stearic, palmitic, arachidic acids
    • A61K31/203—Retinoic acids ; Salts thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/335—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/335—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin
    • A61K31/337—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin having four-membered rings, e.g. taxol
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/41—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having five-membered rings with two or more ring hetero atoms, at least one of which being nitrogen, e.g. tetrazole
    • A61K31/425—Thiazoles
    • A61K31/426—1,3-Thiazoles
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/41—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having five-membered rings with two or more ring hetero atoms, at least one of which being nitrogen, e.g. tetrazole
    • A61K31/425—Thiazoles
    • A61K31/427—Thiazoles not condensed and containing further heterocyclic rings
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/435—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom
    • A61K31/47—Quinolines; Isoquinolines
    • A61K31/4738—Quinolines; Isoquinolines ortho- or peri-condensed with heterocyclic ring systems
    • A61K31/4745—Quinolines; Isoquinolines ortho- or peri-condensed with heterocyclic ring systems condensed with ring systems having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. phenantrolines
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/495—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
    • A61K31/505—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim
    • A61K31/519—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim ortho- or peri-condensed with heterocyclic rings
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/495—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
    • A61K31/505—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim
    • A61K31/519—Pyrimidines; Hydrogenated pyrimidines, e.g. trimethoprim ortho- or peri-condensed with heterocyclic rings
    • A61K31/525—Isoalloxazines, e.g. riboflavins, vitamin B2
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33—Heterocyclic compounds
    • A61K31/555—Heterocyclic compounds containing heavy metals, e.g. hemin, hematin, melarsoprol
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/56—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids
    • A61K31/565—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids not substituted in position 17 beta by a carbon atom, e.g. estrane, estradiol
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/56—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids
    • A61K31/57—Compounds containing cyclopenta[a]hydrophenanthrene ring systems; Derivatives thereof, e.g. steroids substituted in position 17 beta by a chain of two carbon atoms, e.g. pregnane or progesterone
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A61K31/702—Oligosaccharides, i.e. having three to five saccharide radicals attached to each other by glycosidic linkages
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A61K33/06—Aluminium, calcium or magnesium; Compounds thereof, e.g. clay
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
    • A61K33/24—Heavy metals; Compounds thereof
    • A61K33/30—Zinc; Compounds thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/55—Protease inhibitors
    • A61K38/57—Protease inhibitors from animals; from humans
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K45/00—Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
    • A61K45/06—Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0019—Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0048—Eye, e.g. artificial tears
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
    • A61K9/0048—Eye, e.g. artificial tears
    • A61K9/0051—Ocular inserts, ocular implants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14—Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/16—Agglomerates; Granulates; Microbeadlets ; Microspheres; Pellets; Solid products obtained by spray drying, spray freeze drying, spray congealing,(multiple) emulsion solvent evaporation or extraction
    • A61K9/1605—Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/1629—Organic macromolecular compounds
    • A61K9/1635—Organic macromolecular compounds obtained by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyvinyl pyrrolidone, poly(meth)acrylates
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14—Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/16—Agglomerates; Granulates; Microbeadlets ; Microspheres; Pellets; Solid products obtained by spray drying, spray freeze drying, spray congealing,(multiple) emulsion solvent evaporation or extraction
    • A61K9/1605—Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/1629—Organic macromolecular compounds
    • A61K9/1641—Organic macromolecular compounds obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyethylene glycol, poloxamers
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14—Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/16—Agglomerates; Granulates; Microbeadlets ; Microspheres; Pellets; Solid products obtained by spray drying, spray freeze drying, spray congealing,(multiple) emulsion solvent evaporation or extraction
    • A61K9/1605—Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/1629—Organic macromolecular compounds
    • A61K9/1641—Organic macromolecular compounds obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyethylene glycol, poloxamers
    • A61K9/1647—Polyesters, e.g. poly(lactide-co-glycolide)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/14—Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/16—Agglomerates; Granulates; Microbeadlets ; Microspheres; Pellets; Solid products obtained by spray drying, spray freeze drying, spray congealing,(multiple) emulsion solvent evaporation or extraction
    • A61K9/1605—Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/1629—Organic macromolecular compounds
    • A61K9/1658—Proteins, e.g. albumin, gelatin
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/5005—Wall or coating material
    • A61K9/5021—Organic macromolecular compounds
    • A61K9/5031—Organic macromolecular compounds obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyethylene glycol, poly(lactide-co-glycolide)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/51—Nanocapsules; Nanoparticles
    • A61K9/5107—Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/513—Organic macromolecular compounds; Dendrimers
    • A61K9/5146—Organic macromolecular compounds; Dendrimers obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyethylene glycol, polyamines, polyanhydrides
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/51—Nanocapsules; Nanoparticles
    • A61K9/5107—Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/513—Organic macromolecular compounds; Dendrimers
    • A61K9/5146—Organic macromolecular compounds; Dendrimers obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyethylene glycol, polyamines, polyanhydrides
    • A61K9/5153—Polyesters, e.g. poly(lactide-co-glycolide)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/70—Web, sheet or filament bases ; Films; Fibres of the matrix type containing drug
    • A61K9/7007—Drug-containing films, membranes or sheets
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/08—Materials for coatings
    • A61L31/10—Macromolecular materials
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/14—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L31/145—Hydrogels or hydrocolloids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
    • A61L31/14—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
    • A61L31/16—Biologically active materials, e.g. therapeutic substances
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/04—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for ulcers, gastritis or reflux esophagitis, e.g. antacids, inhibitors of acid secretion, mucosal protectants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
    • A61P1/16—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P13/00—Drugs for disorders of the urinary system
    • A61P13/02—Drugs for disorders of the urinary system of urine or of the urinary tract, e.g. urine acidifiers
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
    • A61P19/02—Drugs for skeletal disorders for joint disorders, e.g. arthritis, arthrosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P27/00—Drugs for disorders of the senses
    • A61P27/02—Ophthalmic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/02—Antithrombotic agents; Anticoagulants; Platelet aggregation inhibitors
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00—Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • A61P7/04—Antihaemorrhagics; Procoagulants; Haemostatic agents; Antifibrinolytic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/14—Vasoprotectives; Antihaemorrhoidals; Drugs for varicose therapy; Capillary stabilisers
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C233/00—Carboxylic acid amides
    • C07C233/64—Carboxylic acid amides having carbon atoms of carboxamide groups bound to carbon atoms of six-membered aromatic rings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/81—Protease inhibitors
    • C07K14/8107—Endopeptidase (E.C. 3.4.21-99) inhibitors
    • C07K14/811—Serine protease (E.C. 3.4.21) inhibitors
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L23/00—Compositions of homopolymers or copolymers of unsaturated aliphatic hydrocarbons having only one carbon-to-carbon double bond; Compositions of derivatives of such polymers
    • C08L23/02—Compositions of homopolymers or copolymers of unsaturated aliphatic hydrocarbons having only one carbon-to-carbon double bond; Compositions of derivatives of such polymers not modified by chemical after-treatment
    • C08L23/04—Homopolymers or copolymers of ethene
    • C08L23/08—Copolymers of ethene
    • C08L23/0846—Copolymers of ethene with unsaturated hydrocarbons containing other atoms than carbon or hydrogen atoms
    • C08L23/0853—Vinylacetate
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L67/00—Compositions of polyesters obtained by reactions forming a carboxylic ester link in the main chain; Compositions of derivatives of such polymers
    • C08L67/04—Polyesters derived from hydroxycarboxylic acids, e.g. lactones
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/40—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a specific therapeutic activity or mode of action
    • A61L2300/416—Anti-neoplastic or anti-proliferative or anti-restenosis or anti-angiogenic agents, e.g. paclitaxel, sirolimus
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/60—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a special physical form
    • A61L2300/606—Coatings
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
    • A61L2300/60—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a special physical form
    • A61L2300/62—Encapsulated active agents, e.g. emulsified droplets
    • A61L2300/622—Microcapsules
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
    • A61L2430/36—Materials or treatment for tissue regeneration for embolization or occlusion, e.g. vaso-occlusive compositions or devices
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B82—NANOTECHNOLOGY
    • B82Y—SPECIFIC USES OR APPLICATIONS OF NANOSTRUCTURES; MEASUREMENT OR ANALYSIS OF NANOSTRUCTURES; MANUFACTURE OR TREATMENT OF NANOSTRUCTURES
    • B82Y5/00—Nanobiotechnology or nanomedicine, e.g. protein engineering or drug delivery
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L2203/00—Applications
    • C08L2203/02—Applications for biomedical use
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L2312/00—Crosslinking
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C08—ORGANIC MACROMOLECULAR COMPOUNDS; THEIR PREPARATION OR CHEMICAL WORKING-UP; COMPOSITIONS BASED THEREON
    • C08L—COMPOSITIONS OF MACROMOLECULAR COMPOUNDS
    • C08L29/00—Compositions of homopolymers or copolymers of compounds having one or more unsaturated aliphatic radicals, each having only one carbon-to-carbon double bond, and at least one being terminated by an alcohol, ether, aldehydo, ketonic, acetal or ketal radical; Compositions of hydrolysed polymers of esters of unsaturated alcohols with saturated carboxylic acids; Compositions of derivatives of such polymers
    • C08L29/02—Homopolymers or copolymers of unsaturated alcohols
    • C08L29/04—Polyvinyl alcohol; Partially hydrolysed homopolymers or copolymers of esters of unsaturated alcohols with saturated carboxylic acids
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S977/00—Nanotechnology
    • Y10S977/70—Nanostructure
    • Y10S977/773—Nanoparticle, i.e. structure having three dimensions of 100 nm or less
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S977/00—Nanotechnology
    • Y10S977/902—Specified use of nanostructure
    • Y10S977/904—Specified use of nanostructure for medical, immunological, body treatment, or diagnosis
    • Y10S977/915—Therapeutic or pharmaceutical composition

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Ophthalmology & Optometry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине. В настоящем изобретении заявляется стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала, и устранения непроходимости желчных протоков, мочеиспускательного канала, пищевода и трахеально-бронхиальной непроходимости, представляющий собой в общем случае трубчатую структуру, покрытую композицией, содержащей фактор, подавляющий развитие кровеносных сосудов, и полимерный носитель. В частности примером факторов, подавляющих развитие кровеносных сосудов, является таксол, его аналоги или его производные. Предложенный стент препятствует проникновению опухолей при снижении опасности закупорки отверстия стента. 2 с. и 19 з.п. ф-лы, 3 табл., 22 ил.

Description

Изобретение относится к устройствам для реконструкции просвета расположенных внутри тела каналов, покрытым композициями, включающими факторы, подавляющие развитие кровеносных сосудов, и полимерные носители. Более конкретно - к стентам для расширения просвета расположенных внутри тела каналов, протоков и сосудов.
Предпосылки изобретения
Рак занимает второе место среди причин смертности в США и ответственен более чем за одну пятую часть от общей смертности. Если коротко, то рак характеризуется бесконтрольным делением популяций клеток, которое, как правило, приводит к образованию одной или большего количества опухолей. Хотя в настоящее время рак гораздо легче диагностируют, чем раньше, многие формы, даже при их раннем выявлении, все еще не поддаются лечению.
В настоящее время при лечении рака используется множество методов, в том числе, например, различные хирургические процедуры. Однако если проводить лечение лишь хирургическим способом, то у многих пациентов наблюдается рецидив рака. Помимо хирургического вмешательства многие виды рака лечат с применением комбинированной терапии, включающей использованием цитотоксических химиотерапевтических средств (в частности, винкристина, винбластина, цисплатина, метотрексата, 5-FU и т.д.) и/или радиационную терапию. Одна из сложностей указанного подхода заключается в том, что радиотерапевтические и химиотерапевтические средства являются токсичными по отношению к нормальным тканям и часто вызывают опасные для жизни побочные эффекты. Далее, при таком подходе весьма часто наблюдаются неблагоприятные исходы или временное исчезновение симптомов заболевания.
Помимо хирургии, химиотерапии и радиотерапии предпринимались попытки использовать для уничтожения раковых клеток собственную иммунную систему пациента. Например, было предложено применять бактериальные или вирусные компоненты в качестве адъювантов, с целью стимулировать иммунную систему для уничтожения опухолевых клеток, (см. "Principles of Cancer Biotherapy", Oldham (ed.), Raven Press, New York, 1987). Подобные агенты обычно применяют в качестве адъювантов и неспецифичных стимуляторов в опухолевых моделях животных, однако еще не показано, что они в целом эффективны для лечения людей.
При лечении рака также использовали лимфокины. Если коротко, то лимфокины секретируются разными клетками и обычно оказывают воздействие на специфические клетки, вызывая ответную иммунную реакцию. Примерами лимфокинов являются интерлейкины (IL)-l, -2, -3 и -4, а также колониестимулирующие факторы, такие как G-CSF, GM-CSF и M-CSF. Недавно одна из групп исследователей применила IL-2 для стимулирования клеток периферической кровяной системы, с целью их разрастания и выделения больших количеств клеток, которые являются цитотоксичными для опухолевых клеток (Rosenberg et al., N. Engl. J. Med., 313: 1485-1492, 1985).
Другими группами исследователей для лечения рака предложено использовать антитела. Если коротко, то могут быть получены антитела, распознающие определенные антигены на поверхности клеток, которые либо уникальны для раковых клеток, либо превалируют у раковых клеток, по сравнению с нормальными клетками. Указанные антитела, или "магические пули", могут использоваться сами по себе или в сочетании с токсином, с тем, чтобы они могли специфично нацелиться и поразить раковые клетки (Dilman, "Antibody Therapy", "Principles of Cancer Biotherapy", Oldham (ed.), Raven Press Ltd, New York, 1987). Трудность, однако, заключается в том, что большинство моноклональных антител имеют муриновое происхождение и, таким образом, гиперчуствительность по отношению к муриновому антителу может ограничивать их эффективность, особенно после повторного лечения. Обычные побочные эффекты включают жар, испарину и озноб, высыпания на коже, артрит и нервный паралич.
Дополнительная сложность существующих методов заключается в том, что локальный рецидив и локальный контроль остается важнейшей задачей при лечении злокачественных образований. В частности, в общей сложности 630000 пациентов (в США) ежегодно страдают от локальных заболеваний (не замечено распространение отдаленных метастаз); это составляет 64% от числа всех пациентов, у которых обнаружены злокачественные образования (в него не входит немеланомный рак кожи или карцинома in situ). Для подавляющего большинства этих пациентов хирургическое лечение болезни предоставляет наибольший шанс для выздоровления, и действительно 428000 из них вылечиваются после первичного лечения. К сожалению, у 202000 (или 32% пациентов с локальными заболеваниями) наблюдается рецидив после первичного лечения. Из пациентов, у которых наблюдается рецидив, число тех, у кого наблюдается рецидив локального заболевания, достигает 133000 ежегодно (или 21% от числа пациентов с локальными заболеваниями). Число тех, у кого рецидив связан с отдаленными метастазами, составляет 68000 пациентов ежегодно (11% из всех пациентов с локальными заболеваниями). Еще 102139 пациентов ежегодно умирают непосредственно в результате невозможности контролировать локальное распространение болезни.
Одним из методов, который опробован при лечении опухолей и имел ограниченный успех, является терапевтическая эмболизация. Если коротко, то кровеносные сосуды, которые питают опухоль, преднамеренно блокируют путем введения в сосуды эмболических веществ. С этой целью испытано большое количество материалов, в том числе аутогенных веществ, таких как жир, сгустки крови и измельченные фрагменты мышц, а также искусственные материалы, такие как шерсть, хлопок, стальные шарики, пластиковые или стеклянные шарики, порошок тантала, кремниевые соединения, радиоактивные частицы, стерильный поглощаемый губчатый желатин (Sterispon, Gelfoam), окисленная целлюлоза (Oxycel), стальная спираль, спирт, лиофилизованная твердая мозговая оболочка человека (Lyodura), микрофибриллярный коллаген (Avitene), фибриллы коллагена (Tachotop), губчатый поливиниловый спирт (PVA, Ivalon), импрегнированные барием кремниевые сферы (Biases) и съемные надувные шарики. При использовании указанных методов размер метастаз печени может быть временно уменьшен, однако опухоль отвечает тем, что стимулирует прорастание внутрь нее новых кровеносных сосудов.
Проблемой, связанной с образованием опухоли, является развитие вызванных раком блокад, которые препятствуют прохождению веществ по находящимся внутри организма каналам, таким как желчные протоки, трахея, пищевод, сосудистая система и мочеиспускательный канал. Чтобы держать открытыми проходы, блокированные опухолями или другими веществами, было разработано устройство для реконструкции органов - стент. Примерами обычных стентов являются стеночный стент, стент Штреккера, стент Жиантурко и стент Пальмаца. Основная проблема при использовании стентов заключается, однако в том, что они не препятствуют проникновению опухоли или воспалительного вещества через щели стента. Если указанные вещества проникают внутрь стента и возникает опасность закупорки отверстия стента, то это может привести к блокаде расположенного внутри тела прохода, в который стент установлен. Далее, присутствие стента внутри организма может привести к тому, что активные или воспалительные ткани (в частности, кровеносные сосуды, фибропласты, белые кровяные тельца) попадают в проход стента, что приводит к частичной или полной закупорке стента.
В настоящем изобретении заявляются стенты, покрытые композицией, пригодной для лечения рака и других заболеваний, связанных с развитием кровеносных сосудов.
Краткое описание изобретения
Если коротко, то в настоящем изобретении заявляются устройства, в которых используются композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, для лечения рака и других заболеваний, связанных с развитием кровеносных сосудов. Эти композиции (далее называемые "композициями, подавляющими развитие кровеносных сосудов"), включают (а) фактор, препятствующий развитию кровеносных сосудов и (b) полимерный носитель. В рамках настоящего изобретения в качестве факторов, препятствующих развитию кровеносных сосудов, может использоваться широкий круг молекул, в том числе, например, таксол, аналоги таксола и производные таксола. Аналогично, может использоваться широкий круг полимерных носителей, выборочными примерами которых являются поли(этилен-винилацетат), сшитый 40% винилацетата, сополимер молочной и гликолевой кислот, поликапролактон полимолочной кислоты, сополимеры полиэтилена и винилацетата, сшитые 40% винилацетата и молочной кислоты, сополимеры полимолочной кислоты и поликапролактона.
В соответствии с настоящим изобретением заявляются стенты, имеющие в общем случае трубчатую структуру, а их поверхность покрыта одной или несколькими композициями, подавляющими развитие кровеносных сосудов. В рамках различных вариантов осуществления настоящего изобретения заявляются стенты для устранения закупорки желчных протоков, мочеиспускательных каналов, пищевода, трахеи и бронхов. В каждом из этих вариантов осуществления настоящего изобретения стент имеет в общем случае трубчатую структуру, а его поверхность покрыта вышеуказанной композицией, содержащей таксол, которая подавляет развитие кровеносных сосудов.
Далее настоящее изобретение более подробно поясняется приведенным подробным описанием и прилагаемыми чертежами. Ниже указаны многочисленные ссылки, подробно описывающие некоторые методики и композиции, которые приводятся здесь для справок.
Краткое описание чертежей
На фиг. 1А представлена фотография, на которой изображена культура яйца без оболочки на 6-й день. На фиг. 1В приведен после цифровой обработки на компьютере образ живых неокрашенных капилляров, полученный с помощью стереомикроскопа (1040х). На фиг. 1С показаны микрососуды хорионалантоисной мембраны, которые питаются нижележащими более крупными сосудами (стрелки, 1300х). На фиг. 1D показан разрез хорионалантоисной мембраны толщиной 0,5 мм, наблюдаемый в оптический микроскоп, На этой фотографии приведена композиция хорионалантоисной мембраны, включающая внешний двухслойный эктодерм (Ес), мезодерм (М), содержащий капилляры (стрелки) и разбросанные клетки адвентициальной оболочки, и однослойный эндодерм (Еn)(400х). Фиг. 1Е представляет собой полученную с помощью электронного микроскопа (3500х) фотографию, на которой показана типичная капиллярная структура с тонкостеночными эндотелиальными клетками (острие стрелок) и связанным с ними перицитом.
Фиг. 2А, 2В, 2С и 2D представляют собой серию цифровых образов четырех различных неокрашенных хорионалантоисных мембран, полученных после 48-часового воздействия таксола.
Фиг. 3А, 3В и 3С представляют собой серию фотографий разрезов толщиной 0,5 мм, полученных от обработанных хорионалантоисных мембран в трех различных местах в пределах содержащей сосуды зоны.
Фиг. 4А, 4В и 4С представляют собой серию полученных на электронном микроскопе микрофотографий мест, близких к тем, которые показаны выше на фиг. 3А, 3В и 3С (соответственно).
Фиг. 5 представляет собой гистограмму, на которой приведено числовое распределение размеров микросфер (5% ELVAX с 10 мг сурамина натрия в 5% поливиниловом спирте).
Фиг. 6 представляет собой гистограмму, на которой приведено весовое распределение размеров микросфер (5% ELVAX с 10 мг сурамина натрия в 5%-ном поливиниловом спирте).
На фиг. 7 приведен график, на котором показан вес инкапсулированного сурамина натрия в 1 мл 5%-ного ELVAX.
На фиг. 8 приведен график, на котором указан процент инкапсулированного сурамина натрия в ELVAX.
На фиг. 9 приведена гистограмма распределения размеров 5%-ных микросфер ELVAX, содержащих 10 мг сурамина натрия в 5%-ном поливиниловом спирте, включающем 10% NaCl.
На фиг. 10 приведена гистограмма весового распределения размеров 5%-ных микросфер PLL, содержащих 10 мг сурамина натрия в 5%-ном поливиниловом спирте, включающем 10% NaCl.
На фиг. 11 приведена гистограмма числового распределения размеров 5%-ных микросфер PLL, содержащих 10 мг сурамина натрия в 5%-ном поливиниловом спирте, включающем 10% NaCl.
Фиг. 12 представляет собой график, который показывает количество высвобожденного сурамина натрия в зависимости от времени.
На фиг. 13 приведен пример эмболизации опухоли печени. Фиг. 14 показывает выборочный пример размещения стента, покрытого композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, по настоящему изобретению.
На фиг. 15А приведен график, показывающий влияние отношения сополимер этилена и винилацетата: поли-1-молочная кислота в смеси полимеров на агрегацию микросфер. На фиг. 15В приведена микрофотография, полученная с помощью сканирующего электронного микроскопа, которая показывает размер "маленьких" микросфер. На фиг. 15С приведена микрофотография, полученная с помощью сканирующего электронного микроскопа, которая показывает размер "больших" микросфер. На фиг. 15D приведен график, который показывает выделение таксола с течением времени из сфер, изготовленных из полимерной смеси 50:50 сополимер этилена и винилацетата: поли-1-молочная кислота и наполненных 0,6%-ным (вес/об) раствором таксола, в забуференный фосфатом солевой физиологический раствор (рН 7,4) при температуре 37oС. Незакрашенные кружки соответствуют микросферам "маленького" размера, а закрашенные кружки соответствуют микросферам "большого" размера. На фиг. 15Е приведена фотография хорионалантоисной мембраны, которая показывает результаты высвобождения таксола микросферами ("MS"). Фиг. 15F соответствует фиг. 15Е при большем увеличении.
На фиг. 16 приведен график, показывающий профили высвобождения таксола из поликапролактоновых (PCL) микросфер, содержащих 1%, 2%, 5% или 10% таксола, в забуференный фосфатом солевой физиологический раствор при температуре 37oС. На фиг. 16В представлена фотография, на которой показана хорионалантоисная мембрана, обработанная контрольными микросферами. На фиг. 16С представлена фотография, на которой показана хорионалантоисная мембрана, обработанная микросферами, наполненными 5%-ным таксолом.
На фиг. 17А и 17В, соответственно, представлены два графика, на которых показано высвобождение таксола из пленок сополимера этилена и винилацетата (EVA) и процент таксола, остающегося в тех же пленках с течением времени. На фиг. 17С показано набухание пленок EVA/F127, не содержащих таксол, с течением времени, на фиг. 17D показано набухание пленок EVA /Span 80, не содержащих таксол, с течением времени. На фиг. 17Е приведена зависимость напряжения от деформации в различных смесях EVA/F127.
На фиг. 18А и 18В приведена зависимость точки плавления полимерных смесей PCL/MePEG в зависимости от процентного содержания (18А) и процент увеличения времени, необходимого, чтобы паста PCL начала затвердевать при температуре 60oС в зависимости от количества MePEG (18B). На фиг. 18С показана хрупкость различных полимерных смесей PCL/MePEG. На фиг. 18D приведен график, показывающий изменение веса, выраженное в процентах, с течением времени для полимерных смесей с различным содержанием MePEG. На фиг. 18Е представлен график, показывающий скорость высвобождения таксола с течением времени из различных полимерных смесей, нагруженных 1% таксола. Графики на фиг. 18F и 18G показывают влияние различного содержания таксола на общее количество таксола, высвобождаемого из смеси 20% MePEG/PCL. График, приведенный на фиг. 18Н, показывает влияние MePEG на прочность полимеров MePEG/PCL при пластической деформации.
На фиг. 19А приведена фотография контрольной термопасты (не нагруженной) на хорионалантоисной мембране. На фиг. 19В приведена фотография термопасты, содержащей 20% таксола, на хорионалантоисной мембране.
Фиг. 20А и 20В показывают две фотографии хорионалантоисной мембраны, содержащей опухоль, обработанную контрольной (ненагруженной) термопастой. Фиг. 20С и 20D показывают две фотографии хорионалантоисной мембраны, содержащей опухоль, обработанную нагруженной таксолом термопастой.
График на фиг. 21А показывает влияние таксола на поликапролактоне на рост опухоли. На фиг. 21В и 21С приведены две фотографии, показывающие влияние контрольной термопасты и термопасты, содержащей 10% и 20% таксола, на рост опухоли.
На фиг. 22А представлена фотография синовиальной мембраны из сустава после инъекции забуференного фосфатом солевого раствора. На фиг. 22В представлена фотография синовиальной мембраны из сустава после инъекции микросфер. На фиг. 22С представлена фотография хряща из сустава после инъекции забуференного фосфатом солевого раствора, а на фиг. 22D представлена фотография хряща из сустава после инъекции микросфер.
Подробное описание изобретения
Как указано ранее, в настоящем изобретении заявляются стенты для расширения просвета расположенного внутри тела канала, покрытые композицией, в которой используются факторы, подавляющие развитие кровеносных сосудов, в частности таксол или его аналоги, или его производные, т.е. действие которых приводит к ингибированию роста сосудов. Существует множество простых способов определения подавляющей развитие кровеносных сосудов активности данного фактора, в том, числе, например, анализы с хорионалантоисной мембраной ("САМ") цыплят, как показано ниже, в Примерах 2А и 2С, удаляют оболочку у свежеоплодотворенных куриных яиц и на мембрану помещают диск из метилцеллюлозы, содержащий образец фактора, подавляющего развитие кровеносных сосудов. Через несколько дней (в частности, через 48 час) ингибирование роста сосудов под действием испытуемого образца может быть легко замечено путем визуального изучения хорионалантоисной мембраны в области, окружающей диск из метилцеллюлозы. Ингибирование роста сосудов можно также оценить количественно, например, определяя количество и размер кровеносных сосудов, окружающих диск из метилцеллюлозы, по сравнению с контрольным диском из метилцеллюлозы. Наиболее предпочтительные факторы, подавляющие развитие кровеносных сосудов, пригодные для использования по настоящему изобретению, полностью подавляют образование новых кровеносных сосудов в указанном выше анализе.
Кроме того, может быть использовано множество способов определения в условиях in vivo эффективности факторов, подавляющих развитие кровеносных сосудов, в том числе, например, в мышиных моделях, которые были разработаны с этой целью (см. Robertson et al.. Cancer. Res. 51:1339-1344, 1991). Кроме того, множество примеров анализов в условиях in vivo, относящихся к описываемым различным аспектам настоящего изобретения, более подробно рассматривается далее в Примерах.
Как указано ранее, в настоящем изобретении заявляются стенты для расширения просвета расположенного внутри тела канала, покрытые композицией, содержащей фактор, подавляющий развитие кровеносных сосудов, и полимерный носитель. Если коротко, то в соответствии с настоящим изобретением может использоваться множество факторов, подавляющих развитие кровеносных сосудов. Отдельные примеры включают таксол, его аналоги или его производные.
Эти факторы, подавляющие развитие кровеносных сосудов, будут подробнее рассмотрены далее.
Таксол представляет собой содержащий большое количество заместителей дитерпеноид (Wani et al., J. Am. Chem. Soc., 93: 2325, 1971), который получают после сбора и высушивания коры Taxus brevifolia (тиса тихоокеанского) и из Taxomyces Andreanae и Endophytic Fungus. (Stierle et al., Science 60: 214-216, 1993). В общем случае действие таксола приводит к стабилизации микротрубчатой структуры сосудов за счет присоединения тубулина с образованием ненормальных митотических веретен. "Таксол" (в контексте настоящего изобретения следует понимать, что этот термин включает аналоги и производные таксола, такие как, например, баккатин и таксотер), может быть легко получен с использованием методов, известных специалистам в данной области техники (см. также международные заявки WO 94/07882, WO 94/07881, WO 94/07880, WO 94/07876, WO 93/23555, WO 93/10076, Патенты США с номерами 5294637, 5283253, 5279949, 5274137, 5202448, 5200534 и Европейскую патентную заявку 590267), или от различных промышленных источников, в том числе, например, компании "Sigma Chemical Со. " (Сент-Луис, штат Миссури) (Т7402 - из Taxus brevifolia).
Композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, помимо фактора, ингибирующего развитие кровеносных сосудов, и полимерного носителя, могут дополнительно включать широкий круг соединений. Например, композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, по настоящему изобретению в некоторых вариантах его осуществления могут также содержать один или большее количество антибиотиков, противовоспалительных средств, антивирусных средств, противогрибковых средств и/или средств, убивающих простейших. Отдельными примерами антибиотиков, которые включаются в приведенные в настоящем описании композиции, являются: пенициллины; цефаллоспорины, такие как цефадроксил, цефазолин, цефаклор; аминогликозиды, такие как гентамицин и тобрамицин; сульфонамиды, такие как сульфаметоксазол; и метронидазол. Отдельными примерами противовоспалительных средств являются: стероиды, такие как преднизон, преднизолон, гидрокортизон, адрено-кортикотропный гормон и сульфазалазин; и нестероидные противовоспалительные средства, такие как аспирин, ибупрофен, напроксен, фенопрофен, индометацин и фенилбутазон. Отдельными примерами антивирусных средств являются ацикловир, ганцикловир, зидовудин. Отдельными примерами противогрибковых средств являются нистатин, кетоконазол, гризеофульвин, флуцитозин, миконазол, клотримазол. Отдельными примерами средств, убивающих простейших, являются изетионат пентамидина, хинин, хлорхинин и мефлохин.
Композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут также содержать один или несколько гормонов, таких как гормон щитовидной железы, эстроген, прогестерон, кортизон и/или ростовой гормон, другие биологически активные молекулы, такие как инсулин, а также такие как цитокины ТH1 (в частности, интерлейкины -2, -12 и -15, гамма-интерферон) или ТH2 (в частности, интерлейкины -4 и -10).
Композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут также включать дополнительные ингредиенты, такие как поверхностно-активные вещества (как гидрофильные, так и гидрофобные; см. Пример 13), противоопухолевые или химиотерапевтические средства (в частности, 5-фторурацил, винбластин, доксирубицин, адриамицин или рамоцифен), радиоактивные средства (в частности, Cu-64, Ga-67, Ga-68, Zr-89, Ru-97, Tc-99m, Rh-105, Pd-109, In-111,1-123, 1-125, 1-131, Re-186, Re-188, Au-198, Au-199, Pb-203, At-211, Pb-212 и Bi-212) или токсины (в частности, рицин, абрин, токсин дифтерии, холерный токсин, гедонин, антивирусный белок филолакки американской, тритин, токсин Shigella и экзотоксин A Pseudomonas).
Помимо факторов, подавляющих развитие кровеносных сосудов, и других соединений, рассмотренных выше, композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут включать самые разнообразные полимерные носители, в том числе, например, как биоразлагаемые, так и небиоразлагаемые соединения. Отдельными примерами биоразлагаемых композиций являются альбумин, желатин, крахмал, целлюлоза, декстраны, полисахариды, фибриноген, поли((1,1-лактид), пoли(d, l-лaктид-гликoлид), поли(гликолид), поли(гидроксибутират), поли(алкилкарбонат) и поли(ортоэфиры) (см. L. Illium, S.S. Davids (eds.) "Polymers in Controlled Drug Delivery", Wright, Bristol, 1987; J. Arshady, J. Controlled Release 17: 1-22, 1991; Pitt, Int. J. Phar. 59: 173-196, 1990; Holland et al., J. Controlled Release 4: 155-180, 1986). Отдельными примерами небиоразлагаемых полимеров являются сополимеры этилена и винилацетата, кремнийорганические каучуки и поли(метилметакрилат). Наиболее предпочтительными полимерными носителями являются сополимеры этилена и винилацетата (в частности, ELVAX 40, поли(этилен-винилацетат), сшитый 40%-ами винилацетата; "DuPont. "), поли(молочная кислота-гликолевая кислота), поликапролактон, полимолочная кислота, сополимеры этилена и винилацетата, сшитые 40% винилацетата и полимолочной кислоты, сополимеры полимолочной кислоты и поликапролактона.
Полимерным носителям можно придать разнообразную форму, в том числе, например, форму наносфер или микросфер, форму стержней, таблеток, полосок или капсул (см. , в частности, Goodell et al, Am. J. Hosp. Pharm. 43:1454-1461, 1986; Langer et. al, "Controlled Release of macromolecules from polymers", in: "Biomedical polymers, Polymeric materials and pharmaceuticals for biomedical use", E.P. Goldberg, A. Nakagim (eds.), Academic Press, pp. 113-137, 1980; Rhine et al, J. Pharm. Sci. 69: 265-270, 1980; Brown et al., J. Pharm. Sci. 72: 1181-1185, 1983; и Bawa et al., J. Controlled Release 1: 259-267, 1985).
Композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов и содержащие один или несколько факторов, подавляющих развитие кровеносных сосудов, и полимерный носитель, преимущественно изготавливают в форме, удобной для конкретного использования. В соответствии с предпочтительными вариантами осуществления настоящего изобретения композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, должны быть биоразлагаемыми и высвобождать один или несколько факторов, подавляющих развитие кровеносных сосудов, с течением времени от нескольких недель до нескольких месяцев. Далее, композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, преимущественно должны быть устойчивы в течение нескольких месяцев и их можно было бы получать и хранить в стерильных условиях. В соответствии с некоторыми аспектами настоящего изобретения композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут быть изготовлены в виде частиц любого размера, начиная от наносфер и кончая микросферами (в частности, от 0,1 мкм до 500 мкм), в зависимости от конкретного использования.
Композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут быть также приготовлены, в соответствии с настоящим описанием, для различных применений. Наночастицы (которые называют также "наносферами") могут быть получены с широким диапазоном размеров, включая, например, наночастицы с размерами от 0,1 до 3 мкм, от 10 до 30 мкм и от 30 до 100 мкм (см. Пример 8).
Композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут быть также приготовлены в форме разнообразных "паст" или гелей. Например, композиции, используемые в данном изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут представлять собой жидкость при одной температуре (в частности, при температуре выше 37oС, такой как 40oС, 45oС, 50oС, 55oС или 60oС) и становиться твердыми или полутвердыми при другой температуре (в частности, при обычной температуре тела или при температуре менее 37oС). Подобные "термопасты" могут быть легко получены в соответствии с настоящим описанием (см., в частности, Примеры 10 и 14).
В соответствии с настоящим изобретением, композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, могут быть приготовлены в виде пленки, эти пленки обычно имеют толщину преимущественно менее 5, 4, 3, 2 или I мм, более предпочтительно толщину менее 500 мкм до 100 мкм. Указанные пленки являются преимущественно гибкими с хорошей прочностью на разрыв при пластической деформации (в частности, с величиной более 50, преимущественно более 100 и наиболее преимущественно более 150 или 200 Н/см2), хорошими адгезионными свойствами (т.е. обладают хорошей адгезией к влажным или сырым поверхностям) и обладают хорошей проникающей способностью, отдельные примеры подобных пленок приведены далее в Примерах (см., в частности, Пример 13).
Композиции, используемые в настоящем изобретении, подавляющие развитие кровеносных сосудов, являются нетоксичными, тромбогенными, должны быть непрозрачными для рентгеновских лучей, оказывать быстрое и длительное воздействие, быть стерильными и легко получаться в различной форме или различного размера в процессе использования. Далее, композиции преимущественно должны приводить к медленному (в идеале - в течение от нескольких недель до нескольких месяцев) высвобождению фактора, подавляющего развитие кровеносных сосудов.
Использование композиций, подавляющих развитие кровеносных сосудов, в качестве покрытий стентов
Как указано ранее, в настоящем изобретении заявляются стенты, имеющие в общем случае трубчатую структуру (которая охватывает, например, спиральную форму), поверхность которых покрыта описанной выше композицией. Если коротко, то стент представляет собой распорку, обычно имеющую трубчатую форму, которую можно поместить в находящийся внутри тела проход (в частности, желчные протоки), суженный вследствие протекания болезненного процесса (в частности, вследствие врастания опухоли), чтобы предотвратить закрытие или повторное закрытие прохода. Стент функционирует, физически удерживая открытыми стенки прохода внутри тела, в который он помещен.
В соответствии с настоящим изобретением могут использоваться разнообразные стенты, включая, например, стенты пищевода, сосудистые стенты, стенты желчных протоков, стенты поджелудочной железы, стенты мочеточников и уретральные стенты, стенты слезных путей, стенты евстахиевой трубы, стенты фаллопиевой трубы и трахеально-бронхиальные стенты.
Стенты легко доступны из коммерческих источников или могут быть легко изготовлены по известным методикам. Отдельными примерами стентов являются стенты, описанные в патенте США 4776337, озаглавленном "Expandable Intraluminal Graft, and Method and Apparatus for Implanting and Expandable Intraluminal Graft", патенте США 5176626, озаглавленном "Indweling Stent", патенте США 5147370, озаглавленном "Nitinol Stent for Hollow Body Conduits", патенте США 5064435, озаглавленном "Self Expanding Prosthesis Having Stable Axial Length", патенте США 5052998, озаглавленном "Indwelling Stent and Method of Use", и патенте США 5041126, озаглавленном "Endovascular Stent and Delivery System", которые все приводятся здесь в качестве ссылок.
Стенты могут быть покрыты композициями, подавляющими развитие кровеносных сосудов, или факторами, подавляющими развитие кровеносных сосудов, с использованием различных способов, в том числе, например: (а) непосредственного нанесения на стент композиции, подавляющей развитие кровеносных сосудов (в частности, путем разбрызгивания на стент пленки полимер/лекарство или путем окунания стента в раствор полимер/лекарство), (b) покрытия стента веществом, таким как гидрогель, которое, в свою очередь, абсорбирует композицию, подавляющую развитие кровеносных сосудов (или вышеуказанного фактора, подавляющего развитие кровеносных сосудов), (с) вплетения нити (или самого полимера, сформированного в виде нити), покрытой композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, в структуру стента, (d) размещения стента в муфте или петле, которая изготовлена или покрыта композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, или (с) изготовления самого стента из композиции, подавляющей развитие кровеносных сосудов. В предпочтительных вариантах осуществления изобретения композиция должна надежно прикрепляться к стенту в процессе хранения и в процессе размещения стента и не должна отделяться от стента, когда диаметр стента изменяется при переходе от свернутого состояния в полностью развернутое состояние. Предпочтительные композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, не должны деградировать в процессе хранения, перед размещением стента, или при нагревании до температуры тела после расширения внутри тела. Далее, она предпочтительно должна покрывать стент ровно и однородно, при этом ингибитор процесса развития кровеносных сосудов должен быть распределен равномерно, а стент не менял своих контуров. В соответствии с предпочтительными вариантами осуществления изобретения композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, должны обеспечивать равномерное, поддающееся расчету и продолжительное высвобождение фактора, подавляющего развитие кровеносных сосудов, в окружающие стент ткани после его развертывания. Для сосудистых стентов, помимо вышеуказанных свойств, композиция не должна приводить к появлению у стента тромбогенных свойств (вызывать образование сгустков крови) или вызывать значительную турбулентность потока крови (большую, чем можно было бы ожидать при размещении непокрытого стента).
Заявляемые стенты используются для расширения просветов находящихся внутри тела каналов и протоков. Они предназначены для размещения в канале (протоке), при этом стент имеет в общем случае трубчатую структуру, поверхность которой покрыта композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов (или одним лишь фактором, подавляющим развитие кровеносных сосудов), так что канал расширяется. Ниже приведены различные варианты использования стентов согласно настоящему изобретению, в соответствии с которыми просвет находящегося внутри тела канала расширяют, чтобы устранить закупорку желчных протоков, пищевода, трахеально-бронхиальных каналов, мочеточников или сосудов, кроме того, отдельный пример более подробно рассматривается в Примере 7.
Обычно стенты размещаются аналогичным образом независимо от места и болезни, лечение которой проводится. Если коротко, то, с целью определить подходящее место размещения стента, вначале проводят обследование, обычно методами получения диагностического образа, эндоскопии или непосредственным визуальным наблюдением в процессе проведения операции. Направляющий шнур затем вставляют в разрез или в предполагаемое место размещения стента, а по нему перемещают специальный катетер, который позволяет вставлять стент в его сжатом виде. Обычно стенты можно сжать так, что их можно внести через мельчайшие полости с помощью маленьких катетеров, а после того, как они попадают в нужное место, они расширяются до большего диаметра. Расширившись, стент физически препятствует смыканию стенок прохода и заставляет его быть открытым. Таким образом, стенты можно вставлять через маленькие отверстия, но они способны держать открытыми полости или каналы большого диаметра. Стент может быть саморасширяющимся (в частности, стеночный стент или стент Жиантурко), расширяться при надувании (в частности, стент Пальмаца и стент Штреккера) или имплантироваться при изменении температуры (в частности, стент из нитинола).
Маневры по перемещению стента обычно проводят под радиологическим или визуальным контролем, принимая все меры предосторожности к тому, чтобы разместить стент точно поперек сужения в органе, лечение которого проводится. Направляющий катетер затем удаляют, оставляя стент в качестве подпорки. Для подтверждения правильности размещения обычно чаще используют рентгеноскопию.
Одним из вариантов воплощения изобретения является стент для предотвращения. При этом стент имеет в общем случае трубчатую структуру, поверхность которой покрыта вышеуказанной композицией, так что закупорка желчного протока устраняется. Если коротко, то разрастание опухоли обычного желчного протока приводит к прогрессирующей холестатической желтухе, которая несовместима с жизнью. Обычно желчная система, которая перемещает желчь из печени в двенадцатиперстную кишку наиболее часто закупоривается (1) опухолью, составленной клетками желчного прохода (холангиокарцинома), (2) опухолью, которая вторгается в желчный проток (в частности, при раке поджелудочной железы) или (3) опухолью, которая оказывает внешнее давление и сжимает желчный проток (в частности, увеличенные лимфатические узлы).
Как первичные опухоли печени, так и другие опухоли, вызывающие сжатие дерева желчных протоков, можно лечить с использованием стентов, приведенных в настоящем описании, одним из примеров первичных опухолей являются аденокарциномы (которые также называют опухолями Клатскина, если они обнаруживаются в разветвлении обычного протока печени). Указанные опухоли часто относят к раку печени, холедохолангиокарциномам или железистому раку желчной системы. Доброкачественные опухоли, которые оказывают воздействие на желчные протоки (в частности, аденома желчной системы) и в редких случаях плоскопленочный рак желчных протоков и аденокарциномы желчного пузыря также могут сжимать желчные протоки, а следовательно, привести к непроходимости желчи.
Сжатие дерева желчных протоков в первую очередь является следствием опухолей печени и поджелудочной железы, которые сжимают, а потому закупоривают протоки. Большинство опухолей поджелудочной железы возникает из клеток протоков поджелудочной железы. Эта форма рака характеризуется очень высокой смертностью (5% от всех смертей, вызванных раком; 26000 новых случаев в США ежегодно), при этом среднее время жизни больных составляет 6 месяцев, а до одного года доживает лишь 10% больных. Когда указанные опухоли располагаются в головке поджелудочной железы, они часто вызывают непроходимость желчи, что значительно ухудшает качество жизни пациентов. Хотя все типы опухолей поджелудочной железы обычно называют "раком поджелудочной железы", существуют ее гистологические подтипы, включающие: железистый рак, аденосквамозный рак, цистаденокарциному и рак гроздевидных клеток, опухоли печени, как указано ранее, также могут вызывать сжатие дерева желчных протоков и, следовательно, закупорку желчных протоков.
Стент желчного протока вначале помещают в желчный канал одним из следующих способов: с верхнего конца, вводя иглу через стенку брюшной полости и через печень (чрескожно-чреспеченочная холангиография); с нижнего конца путем каннелирования желчного протока с помощью эндоскопа, который вводят через рот, желудок или двенадцатиперстную кишку (эндоскопическая дегенеративная холангиография); или прямым рассечением при проведении хирургической операции. Обычно перед хирургической операцией проводят чрескожно-чреспеченочную холангиографию, эндоскопическую дегенеративную холангиографию или прямую визуализацию, с целью определения соответствующего участка для размещения стента. Затем через разрез вводят направляющий шнур, а через него пропускают катетер для доставки, который позволяет разместить стент в свернутой форме. Если при диагностике используют чрескожно-чреспеченочную холангиографию, то направляющий шнур и катетер помещают через стенку брюшной полости, а если первичные исследования проводят методом эндоскопической дегенеративной холангиографии, то стент вводят через рот. Затем стент размещают, проводя радиологический, эндоскопический или прямой визуальный контроль и принимая специальные меры для того, чтобы стент был размещен точно поперек сужения желчного протока. Катетер для доставки удаляют, и он оставляет стент в виде подпорки, которая удерживает проток открытым. С целью определить, что стент установлен правильно, проводят дальнейшую холангиографию.
В других вариантах осуществления настоящего изобретения предлагается стент для устранения непроходимости пищевода, который в общем случае имеет трубчатую структуру, а его поверхность покрыта вышеуказанной композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, так что устраняется непроходимость пищевода. Если коротко, то пищевод представляет собой полую трубку, по которой транспортируется пища и жидкости изо рта в желудок. Рак пищевода или инвазия рака из соседних органов (в частности, рака желудка или рака легких) приводит к невозможности проглатывать пищу или слюну. В этом варианте осуществления изобретения перед введением стента необходимо провести предварительное исследование, обычно с помощью назначаемого внутрь соединения бария или методом эндоскопии, с целью определить нужное место размещения стента. Затем через рот вводят катетер или эндоскоп и через блокаду вводят направляющий шнур. Катетер для доставки стента перемещают по направляющему шнуру при радиологическом или эндоскопическом контроле, а стент размещают точно в месте сужения пищевода. Наблюдение после размещения стента, с целью подтверждения правильности установки, можно провести методом флюороскопии с использованием назначаемого внутрь соединения бария.
В других вариантах осуществления изобретения предлагаются стенты для устранения трахеально-бронхиальных закупорок, которые в общем случае имеют трубчатую структуру, а их поверхности покрыты вышеуказанной композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, так что устраняется трахеалъно-бронхиальная закупорка. Если коротко, то трахея и бронхи представляют собой трубки, по которым воздух изо рта или носа подается в легкие. Блокирование трахеи раком, инвазией рака, возникающего в соседних органах (в частности, рака легких) или схлопывание трахеи или бронхов вследствие хондромаляции (размягчения хрящевой ткани) приводит к невозможности дышать. В этом варианте осуществления настоящего изобретения обычно проводят предварительное исследование методом эндоскопии, с целью определения подходящего места для размещения стента. Затем через рот вводят катетер или эндоскоп и через блокаду вводят направляющий шнур. Катетер для доставки стента перемещают по направляющему шнуру, чтобы ввести стент в сжатом состоянии. Стент размещают при радиологическом или эндоскопическом контроле, чтобы установить его точно поперек сужения, затем катетер для доставки извлекают и стент остается в виде подпорки. Наблюдение после размещения стента, с целью подтверждения правильности установки, можно провести методом бронхоскопии.
В другом варианте осуществления изобретения предлагаются стенты для устранения непроходимости мочеиспускательного канала, так называемые уретральные стенты, которые предназначены для размещения в мочеиспускательном канале, при этом стент в общем случае имеет трубчатую структуру, а его поверхность покрыта вышеуказанной композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, так что устраняется закупорка мочеиспускательного канала. Если коротко, то мочеиспускательный канал представляет собой трубку, соединяющую мочевой пузырь с половым членом. Наружное сужение мочеиспускательного канала по пути его через предстательную железу, вызванное гипертрофией предстательной железы, наблюдается практически у всех мужчин в возрасте старше 60 лет и вызывает прогрессирующие затруднения в мочеиспускании. В этом варианте осуществления настоящего изобретения вначале обычно проводят предварительное исследование методом эндоскопии или уретрографии, с целью определения подходящего места для размещения стента, которое расположено выше внешнего сфинктера мочеиспускательного канала в нижнем конце и вблизи шейки мочевого пузыря в верхнем конце. Затем через отверстие полового члена вводят катетер или эндоскоп и продвигают направляющие в мочевой пузырь. Катетер для доставки стента перемещают по направляющим, чтобы установить стент, затем катетер для доставки извлекают и стент расширяется в месте его установки. Наблюдение после размещения стента, с целью подтверждения правильности его установки, можно провести методом эндоскопии или дегенеративной уретрографии.
В соответствии с другим вариантом осуществления настоящего изобретения заявляются стенты для устранения закупорки сосудов. Сосудистый стент предназначен для размещения в кровеносном сосуде, при этом стент в общем случае имеет трубчатую структуру, а его поверхность покрыта вышеуказанной композицией, подавляющей развитие кровеносных сосудов, так что устраняется закупорка сосуда. Если коротко, то стенты могут быть размещены в самых разнообразных кровяных сосудах, как артериях, так и венах, с целью предотвращения рецидивирующего стеноза в случае неудачных пластических операций на сосудах, при лечении сужений, которое вероятнее всего будет неудачным, если применить пластическую операцию, и при лечении послеоперационных сужений (в частности, диализного стеноза трансплантата). Отдельными примерами подходящих стентов являются подвздошный стент, почечный стент и стент коронарных артерий, стент верхней полой вены и диализный трансплантат. В одном из вариантов осуществления настоящего изобретения вначале проводят рентгеноангиографию, с целью локализации места установки стента. Практически это осуществляют путем инъекции непрозрачного для рентгеновских лучей контрастного материала, который вводят в артерию или вену с помощью катетера по мере проведения рентгеноскопии. Катетер можно ввести как чрескожно, так и хирургическим способом в бедренную артерию, плечевую артерию, бедренную вену или плечевую вену и продвинуть в соответствующий кровяной сосуд перемещением по сосудистой системе под контролем методом флюороскопии. Затем поперек сосудистого стеноза может быть размещен стент. Наблюдение после размещения стента, с целью подтверждения правильности его установки, можно провести методом ангиографии.
Следующие примеры приводятся для иллюстрации, а не для
ограничения настоящего изобретения.
ПРИМЕРЫ
Пример 1.
Анализ различных средств на ингибирующую активность по отношению к развитию кровеносных сосудов
А. Анализ хорионалантоисной мембраны цыплят
Оплодотворенные эмбрионы цыплят перед получением безоболочечной культуры выдерживают в инкубаторе в течение 3 дней. В соответствии с этой методикой содержимое яиц высвобождают, удаляя оболочку, расположенную вокруг воздушного пространства. Мембрану внутренней оболочки отделяют и противоположный конец оболочки протыкают, чтобы содержимое яйца могло осторожно вылиться из тупого конца. Содержимое яйца выливают в круглодонную стерильную стеклянную чашку и покрывают крышкой от чашки Петри. Помещают в инкубатор с относительной влажностью 90% и с содержанием диоксида углерода 3% и выдерживают в течение 3 дней.
Таксол ("Sigma", Сент-Луис, штат Миссури) смешивают с концентрацией 1, 5, 10, 30 мг на 10 мл аликвоты 0,5%-ного водного раствора метилцеллюлозы. Поскольку таксол не растворяется в воде, для получения тонкодисперсных частиц используют стеклянные шарики. Аликвоты по 10 микролитров полученного раствора высушивают на пленке в течение 1 час с образованием дисков размером 2 мм в диаметре. Высушенные диски, содержащие таксол, осторожно помещают на растущий край каждого образца хорионалантоисной мембраны на 6-й день инкубации, контрольные образцы получают, помещая не содержащие таксол диски на хорионалантоисную мембрану на то же самое время. Через 2 дня экспонирования (8 дней инкубации) исследуют сосудистую систему с помощью стереомикроскопа. Липозин II в виде белого непрозрачного раствора вводят с помощью инъекции в хорионалантоисную мембрану, с целью визуализации деталей сосудов, сосудистая система неокрашенных живых эмбрионов визуализируют с помощью стереомикроскопа фирмы "Zeiss", который сопрягают с видеокамерой ("Dage-MTI Inc.", Мичиган-Сити, штат Иллинойс). Указанные сигналы передают на дисплей при увеличении в 160 раз и захватывают с помощью системы анализа образа ("Vidas, Rontron", Энкинг, Германия). Негативы образа затем получают с помощью графопостроителя (Модель 3000, "Matrix Instruments", Оранжбург, штат Нью-Йорк).
Мембраны восьмидневных безоболочечных эмбрионов питают 2%-ным глутаровым альдегидом в 0,1 М буферном растворе какодилата натрия; в хорионалантоисную мембрану вводят дополнительное количество комплементсвязывающего антитела. Через 10 минут in situ хорионалантоисную мембрану удаляют и на 2 час при комнатной температуре помещают в свежий раствор комплементсвязывающего антитела. Затем оставляют ткани промываться на ночь в какодилатном буфере, содержащем 6% сахарозы. Представляющие интерес области подвергают послефиксационной обработке в 1%-ном растворе тетроксида осмия в течение 1,5 час при температуре 4oС. Затем ткани обезвоживают последовательно этанолом, оксидом пропилена и внедряют в смолу Spurr. Полученные срезы разрезают алмазным лезвием, помещают на медную сетку, окрашивают и изучают с помощью электронного микроскопа 1200ЕХ фирмы "Jeol". Аналогично готовят срезы толщиной 0,5 мм и окрашивают их с помощью толуолового голубого для изучения методом оптической микроскопии.
На 11 день развития эмбрионы цыплят используют в методе коррозионного формообразования. Смолу Мегсох ("Ted Pella, Inc.", Реддинг, штат Калифорния) вводят в сосудистую систему хорионалантоисной мембраны с помощью гиподермической иглы номер 30. Материал для формообразования включает 2,5 г полимера Мегсох CL-2B и 0,05 г катализатора (55%-ная перекись бензоила), время полимеризации которого составляет 5 минут. После инъекции пластику позволяют дать усадку в течение 1 час при комнатной температуре, а затем в течение ночи при температуре 65oС. Хорионалантоисную мембрану помещают в 50%-ный водный раствор гидроксида натрия, чтобы переработать все органические компоненты. Пластиковые формы затем тщательно промывают дистиллированной водой, сушат на воздухе, покрывают золотом/палладием и исследуют с помощью электронного микроскопа 501В фирмы "Philips".
Результаты вышеописанных экспериментов приведены на фиг. 1-4. Если коротко, то основные характеристики нормальной культуры безоболочечного куриного яйца представлены на фиг. 1А. Через б дней выдерживания в инкубаторе эмбрионы располагается в центре по отношению к радиалъно распространяющейся сети кровеносных сосудов; хорионалантоисная мембрана развивается в непосредственной близости от эмбриона. Эти растущие сосуды находятся вблизи поверхности и легко различимы, что делает эту систему идеальной моделью для изучения процесса развития кровеносных сосудов. Живую неокрашенную сеть капилляров хорионалантоисной мембраны можно неинвазивно визуализировать с помощью стереомикроскопа. На фиг. 1В показана эта сосудистая область, в которой кровяные элементы клетки внутри капилляров регистрируют с использованием интерфейса монитор/компьютер. Трехмерная структура подобной капиллярной сети хорионалантоисной мембраны получена методом коррозионного формообразования и визуализована с помощью сканирующего электронного микроскопа (фиг. 1С). Это формование вскрывает нижележащие сосуды, которые простираются в сторону поверхности хорионалантоисной мембраны, где они образуют один слой анастомозных капилляров.
Поперечные сечения хорионалантоисной мембраны показывают внешний эктодерм, составленный двумя слоями клеток, более широкий слой мезодерма, содержащий капилляры, который примыкает к эктодерму, адвентициальную оболочку и внутренний одиночный слой, составленный клетками эндодерма (фиг. 1D). Электронная микроскопия позволяет увидеть типичные структурные детали капилляров хорионалантоисной мембраны. Обычно эти сосуды лежат в непосредственной близости от внутреннего слоя эктодерма (фиг. 1E).
Через 48 час воздействия концентрациями таксола, равными 1, 5, 10 или 30 мг, каждую хорионалантоисную мембрану исследуют в живых условиях с помощью стереомикроскопа, снабженного интерфейсом монитор/компьютер, с целью установить воздействие процесса развития кровеносных сосудов. Это приспособление для визуализации используют при увеличении в 160 раз, что позволяет непосредственно наблюдать клетки крови внутри капилляров; при этом можно легко обнаружить и зарегистрировать ток крови в представляющих интерес областях. В этом исследовании подавление развития кровеносных сосудов определяют как область хорионалантоисной мембраны, лишенную сети капилляров и составляющую 2-6 мм в диаметре. В ингибированных областях ток крови в сосудах отсутствует и они наблюдаются лишь в экспериментальных условиях с использованием метилцеллюлозы, содержащей таксол; в контрольных экспериментах с использованием дисков, не содержащие таксол, воздействие на развивающуюся капиллярную систему не наблюдается. Экспериментальные данные в зависимости от дозы таксола при различных концентрациях приведены в Таблице I. (см. в конце описания).
Типичные хорионалантоисные мембраны, обработанные таксолом (фиг. 2А и 2В), показаны вместе с прозрачным диском из метилцеллюлозы, расположенным в центре лишенной сосудов зоны с диаметром 6 мм. При несколько большем увеличении ясно видна периферия указанной лишенной сосудов области (фиг. 2С); окружающие функциональные сосуды часто меняют направление в сторону от источника таксола (фиг. 2С и 2D). Подобные углы направленного в новую сторону потока крови никогда не наблюдается в нормальных условиях. Другой особенностью воздействия таксола является образование островков крови в лишенной сосудов зоне, что указывает на агрегацию кровяных клеток.
Связанные с воздействием таксола морфологические изменения хорионалантоисной мембраны легко различимы как в оптическом, так и в электронном микроскопе. Для удобства рассмотрения приведены три отличительные фазы при общем переходе от нормального состояния до лишенного сосудов состояния. Вблизи периферии лишенной сосудов зоны в хорионалантоисной мембране отмечается избыток митотических клеток внутри всех трех слоев эмбриона (фиг. 3А и 4А). Это повышенное деление митотических клеток также устойчиво наблюдается для эндотелиальных клеток капилляров. Однако места соединения клеток эндотелия остаются незатронутыми и транссудация клеток крови не наблюдается. Последующая деградация хорионалантоисной мембраны характеризуется разрушением и растворением капилляров (фиг. 3В и 4В). Предположительно эндотелиальные клетки, обычно захваченные при митотическом делении, все еще сохраняют тесные пространственные связи с клетками крови и располагаются непосредственно рядом с эндодермом; однако эти клетки уже не соединяются между собой. Расположенная в самом центре часть лишенной кровеносных сосудов зоны характеризуется увеличенной толщиной эктодермального и эндодермального слоев (фиг. 3С и 4С). Хотя эти слои увеличили свою толщину, клеточные связи остались незатронутыми и слои сохраняют свою структурные особенности. Внутри мезодерма наблюдается множество разбросанных клеток, захваченных при митотическом делении; эти клетки не обладают поляризацией клеток эндотелия, которая наблюдалась в предыдущей фазе. По всей этой лишенной сосудов зоне располагаются деградирующие клетки, что отмечается наличием небольших полостей в тканях и клеточных остатков, непрозрачных при исследовании в электронном микроскопе (фиг. 4С).
Таким образом, это исследование показывает, что через 48 часов после нанесения таксола на хорионалантоисную мембрану развитие кровеносных сосудов подавляется. Ингибирование развития кровеносных сосудов приводит к формированию лишенной сосудов зоны, которая в зависимости от воздействия таксола характеризуется наличием трех зон. Центральная зона, где воздействие максимально, содержит разрушенные капилляры с вырожденными красными кровяными тельцами; это указывает на то, что межклеточные связи между клетками эндотелия отсутствуют. Клетки эндодерма и эктодерма сохраняют свои межклеточные связи, а потому эти слои эмбриона остаются незатронутыми; однако они слегка утолщены. При приближении к нормальной содержащей сосуды области кровеносные сосуды сохраняют свои связанные комплексы, а потому также остаются незатронутыми. На периферии обработанной таксолом зоны ингибируется рост новых кровеносных сосудов, что проявляется в изменении направления или эффекте "локтя" кровеносных сосудов (фиг. 2D).
В областях, обработанных таксолом, наблюдается также обилие клеток, захваченных митотическим делением во всех трех слоях хорионалантоисной мембраны; это явление уникально для таксола, поскольку в предыдущих исследованиях оно не отмечено. Захваченные митозом клетки эндотелия не могут выполнять свои метаболические функции, связанные с развитием новых кровеносных сосудов. Для сравнения, лишенная сосудов зона, образующаяся под действием сурамина и ацетата кортизона, не приводит к образованию в хорионалантоисной мембране захваченных при митотическом делении клеток; указанные препараты лишь препятствуют дальнейшему росту кровеносных сосудов в сторону подвергнутой обработке области. Таким образом, хотя указанные средства и являются ингибиторами процесса развития кровеносных сосудов, сохраняется большое количество точек, на которые может нацелиться процесс развития кровеносных сосудов.
Наблюдалось также воздействие таксола в течение 48 час и было обнаружено, что подавление ангиогенеза начинается уже через 9 час после нанесения. Гистологические срезы показывают одинаковую морфологию, которая наблюдается в первой переходной фазе лишенной сосудов зоны после 48 час, что показано на фиг. 3А и 4А. Также наблюдали развитие реваскуляризационного процесса в ранее наблюдаемой лишенной сосудов зоне. Было показано, что лишенная сосудов зона, образующаяся под действием гепарина и стероидов, подавляющих развитие кровеносных сосудов, реваскуляризуется через 60 час после применения указанных препаратов. В нашем исследовании лишенная сосудов зона, полученная обработкой таксолом, не реваскуляризуется в течение, по крайней мере, 7 дней после применения препарата, что свидетельствует о потенциально более длительном воздействии.
Пример 2. Инкапсулирование таксола
500 мкг таксола или баккатина (аналог таксола, получают из компании "Inflazyrne Pharmaceuticals Inc. ", Ванкувер, Британская Колумбия, Канада) растворяют в 1 мл смеси 50:50 ELVAX:PLL. Затем получают 3 порции микросфер в устройстве для приготовления растворов (шестишпиндельная исследовательская машина, "VanderKanp, Van Kell Industries Inc.", США) при перемешивании в течение 3 час со скоростью 200 об/мин при температуре 42oС. Полученные таким образом микросферы дважды промывают водой и их размер оценивают с помощью микроскопа.
Определение инкапсулирования проводят с помощью УФ спектрометра λmax 237 нм, возбуждение флюоресценции при 237 нм, испускание при 325 нм); результаты исследований представлены в квадратных скобках [ ]). При использовании вышеописанной методики из общего количества 500 мкг исходного вещества может быть инкапсулировано 58 мкг (+/-12 мкг) [75 мкг (+/-25 мкг)] таксола. Это соответствует 12% (+/-2,4%) [15% (+/-5%)1 от первоначального веса или 1,2% (+/-0,25%) от веса полимера. Через 18 час после выдерживания в сушильном шкафу при температуре 37oС 10,3%(+/-10%) [6%(+/-5,6%)] общего количества таксола было высвобождено из микросфер.
Для баккатина, 100 +/-15 мкг [83 +/-23 мкг] баккатина может быть инкапсулировано из общего количества 500 мкг исходного вещества. Это соответствует 20% (+/-3%) [17%(+/-5%)] от первоначального веса баккатина и 2%(+/-0,3%) [1,7%(+/-0,5%)] от веса полимера. Через 18 часов после выдерживания в сушильном шкафу при температуре 37oС 55%(+/-13%) [60%(+/-23%)] баккатина высвобождается из микросфер.
Пример 3. Исследование хирургической пасты, содержащей композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов
Крыс Fisher весом приблизительно 300 г анестезируют и делают им поперечный разрез длиной 1 см в верней части брюха. В две из пяти долей печени вводят 0,2 мл физиологического солевого раствора, содержащего один миллион живых клеток гликосаркомы 9L (элюируют непосредственно перед использованием из тканевой культуры), протыкая оболочку печени на глубину 1 см с помощью иглы номер 27. Рану на брюхе зашивают, используя рассасывающийся шовный материал номер 6,0 и кожные скобки и реакцию антиген-антитело прерывают.
Через две недели метастазы опухоли имеют размер приблизительно 1 см. К этому времени обе печеночные опухоли удаляют и на голые края печени тампоном наносят средство, подавляющее развитие кровеносных сосудов. Крыс делят на две группы: одной половине наносят лишь полимерный носитель, а второй половине наносят композицию, подавляющую развитие кровеносных сосудов.
Крыс умерщвляют на 2, 7, 14, 21 и 84 день после проведения операции на печени. В частности, крыс подвергают легкой смерти, вводя им эутанил в заднюю вену хвоста. Печень, селезенку и оба легких извлекают и для исследования опухолей на предмет наличия интибирующей активности по отношению к развитию кровеносных сосудов проводят гистологический анализ.
Пример 4. Трансплантация стентов желчных протоков у крыс
Крысам Fisher весом 300 г делают общий наркоз, делают поперечный разрез длиной 1 см в верхней части брюха и находят печень. В ближайшую к поверхности долю печени вводят 0,2 мл физиологического солевого раствора, содержащего один миллион живых клеток гликосаркомы 9L (элюируют непосредственно перед использованием из тканевой культуры), протыкая оболочку печени на глубину 1 см с помощью иглы номер 27. Чтобы остановить кровотечение, на место прокола после удаления игла кладут тампон. По мере вытаскивания иглы в нее вводят солевой раствор, чтобы предотвратить попадание клеток в брюшинную полость или вдоль пути движения иглы. На место каждого прокола для остановки кровотечения помещают тампон. Общую анестезию прерывают и крыс возвращают в питомник, где они получают обычную пищу.
Через две недели вновь осуществляют общий наркоз и в асептических условиях идентифицируют долю печени, содержащую опухоль, и проводят разрез по средней линии. Затем сквозь оболочку печени в опухоль вводят ангиографическую иглу номер 16, через иглу вводят 0,038 дюймовый (0,96 мм) направляющий шнур и иглу вынимают. Вдоль направляющего шнура в опухоль вводят французский расширитель номер 5, затем вдоль направляющего шнура вводят французский катетер для доставки номер 5 с находящимся в нем в сжатом состоянии стальным стеночным стентом (5 мм в диаметре и 1 см в длину). Стент размещают внутри опухоли и катетер для доставки извлекают. Одной трети крыс внутри опухоли размещают обычные стальные стенты, одной трети крыс внутри опухоли размещают стальные стенты, покрытые полимером, а одной трети крыс внутри опухоли размещают стальные стенты, покрытие композиций полимер-фактор, подавляющей развитие опухоли. Общий наркоз прерывают и крыс возвращают в питомник.
Через два дня проводят простое флюороскопическое обследование, с целью определения степени раскрытия стента, крыс умерщвляют на 2, 7, 14, 28 и 56 день после размещения стента, вводя эутанил, и их печень удаляют en bloc после наступления смерти. После фиксирования в формальдегиде в течение 48 час печень разрезают с интервалом 0,5 мм; одновременно проводят и поперечный разрез стента, используя каждый раз новое лезвие. Гистологические разрезы окрашивают с помощью гематоксилина и эозина и анализируют, с целью определить степень врастания опухоли в полость стента.
Пример 5. Изготовление микросфер
Оборудование, которое является предпочтительным для изготовления микросфер, которые описываются ниже, включает: стакан (из кимакса или пирекса) емкостью 200 с водяной рубашкой, водяную баню с циркуляцией фирмы "Haake", размещаемую сверху мешалку и контроллер диаметром 2 дюйма (50,8 мм) (4-х лопастная мешалка пропеллерного типа из нержавеющей стали фирмы "Fisher"), стеклянный стакан емкостью 500 мл, магнитную мешалку с подогревом (от фирмы "Corning"), 4 X 50 мл полипропиленовые трубки для центрифуги (от фирмы " Nalgene"), стеклянные пробирки для сцинтилляции с пластиковыми крышечками, настольную центрифугу (от фирмы "GPR Beckman"), высокоскоростную напольную центрифугу (модель JS 21 фирмы "Beckman"), аналитические весы фирмы "Mettler" (модель AJ 100, 0,1 мг), цифровые аналитические весы с верхней загрузкой фирмы "Mettler" (модель АЕ 163, 0,01 мг), автоматическую пипетку (от фирмы "Gilson"). Используемые реагенты включают поликапролактон (PCL) с молекулярным весом от 10000 до 20000 ("Polysciences", Уоррингтон, штат Пенсильвания, США), "промытый" этиленвинилацетат (EVA, промывают с целью удаления антиоксиданта ВНТ), поли(d1)молочную кислоту (PLA) с молекулярным весом от 15000 до 25000 ("Polysciences"), поливиниловый спирт (PVA) с молекулярным весом от 124000 до 186000; гидролизован на 99% ("Aldrich Chemical Co", Миллуоки, штат Висконсин, США), дихлорметан для жидкостной хроматографии высокого разрешения ("Fisher Scientific Co") и дистиллированную воду.
А. Приготовление 5%-ных (вес/об) растворов полимеров
В зависимости от приготавливаемого раствора полимера 1,00 г поликапролактона или поли(d1)молочной кислоты или по 0,50 г поли(d1)молочной кислоты и промытого этиленвинилацетата отвешивают непосредственно в стеклянные пробирки для сцинтилляции емкостью 20 мл. Добавляют 20 мл дихлорметана и пробирки плотно закрывают. Пробирки оставляют при комнатной температуре (25oС) на один час (изредка можно встряхивать) или до тех пор, пока полимер не растворится (раствор должен быть прозрачным). Раствор можно хранить при комнатной температуре, по крайней мере, две недели.
В. Получение 5%-ного (вес/об) маточного раствора поливинилового спирта
Двадцать пять граммов поливинилового спирта непосредственно отвешивают в стеклянный стакан емкостью 600 мл. Добавляют 500 мл дистиллированной воды и покрытый тефлоном якорь мешалки длиной 3 дюйма (76,2 мм). Стакан накрывают стеклом, чтобы уменьшить потери, вызванные испарением, и помещают в стеклянный стакан емкостью 2000 мл, содержащий 300 мл воды (которая играет роль водяной бани). Поливиниловый спирт перемешивают со скоростью 300 об/мин при температуре 85oС (на мешалке с подогревом фирмы "Corning") в течение 2 час или до полного растворения. Растворение поливинилового спирта можно определить визуально; раствор должен быть прозрачным. Раствор переносят в стеклянный контейнер с завинчивающейся крышкой и хранят при температуре 4oС не более двух месяцев, однако, перед использованием или разбавлением раствор необходимо нагреть до комнатной температуры.
С. Методика получения микросфер
В зависимости от размеров изготавливаемых микросфер (см. Таблицу II), 100 мл раствора поливинилового спирта (концентрации указаны в таблице II) помещают в стакан с водяной рубашкой емкостью 200 мл. Водяную баню фирмы "Haake" с циркулирующей водой подсоединяют к этому стакану и дают температуре, содержимого установиться на уровне 27oС (+/-1oС) в течение 10 минут. В зависимости от размеров изготавливаемых микросфер (см. Таблицу II) устанавливают стартовую скорость верхней мешалки, а лопасти мешалки наполовину помещают в раствор поливинилового спирта. Мешалку включают и в перемешиваемый раствор поливинилового спирта добавляют по каплям в течение 2 минут 10 мл раствора полимера (раствор полимера используют в зависимости от типа изготавливаемых микросфер) с помощью автоматической пипетки емкостью 5 мл. Через 3 минуты устанавливают необходимую скорость перемешивания (Таблица II) и раствор перемешивают в течение 2,5 час, затем лопасти мешалки вынимают из препарата микросфер и промывают их 10 мл дистиллированной воды, так что промывочный раствор стекает в препарат микросфер. Затем препарат микросфер выливают в стакан емкостью 500 мл и водяную рубашку промывают 70 мл дистиллированной воды, которой также дают стечь, а препарат микросфер 180 мл препарата микросфер затем перемешивают стеклянной палочкой и равными частями выливают в четыре трубки для центрифуги из полипропилена емкостью 50 мл. Затем трубки закрывают крышками и центрифугируют в течение 10 минут (величина ускорения указана в Таблице II). Для удаления 45 мл раствора поливинилового спирта от каждой таблетки микросфер применяют автоматическую пипетку емкостью 5 мл или вакуумный отсос.
В каждую пробирку для центрифугирования затем добавляют по пять миллилитров дистиллированной воды и перемешивают, чтобы ресуспендировать микросферы. Затем четыре суспензии микросфер сливают в одну трубку для центрифугирования вместе с 20 мл дистиллированной воды и центрифугируют еще в течение 10 минут (ускорение указано в Таблице II). Эту процедуру повторяют еще дважды, т.е. всего три раза. Микросферы затем центрифугируют в последний раз и вновь подвергают дисперсии в 10 мл дистиллированной воды. После последней промывки препарат микросфер переносят в заранее взвешенную стеклянную пробирку для сцинтилляции. Пробирку закрывают крышкой и оставляют на ночь при комнатной температуре (25oС), давая возможность микросферам осесть под действием силы тяжести. Микросферы, размер которых попадает в диапазон от 0,1 мкм до 3 мкм, не оседают под действием силы тяжести, так что они остаются в 10 мл суспензии.
D. Сушка микросфер с диаметром 10-30 мкм или 30-100 мкм
После того, как микросферы осели при стоянии в течение ночи при комнатной температуре для удаления жидкости над осадком от седиментированных микросфер используют автоматическую пипетку емкостью 5 мл или вакуумный отсос. Дают микросферам высохнуть в незакрытой пробирке в течение одной недели до тех пор, пока они полностью не высохнут (до постоянного веса пробирки). Более быстрое высушивание может быть достигнуто, если оставить незакрытые пробирки под вытяжным шкафом в токе азота (поток газа составляет приблизительно 10 мл/мин). После полного высушивания (до постоянного веса пробирки) пробирку взвешивают и закрывают крышкой. Снабженную меткой закрытую крышкой пробирку хранят в шкафу при комнатной температуре. Микросферы обычно хранят не более 3 месяцев.
Е. Сушка микросфер с диаметром 0,1-3 мкм
Микросферы с размерами в указанном интервале не оседают, так что их оставляют при 4oС не более чем на четыре недели. Чтобы определить концентрацию микросфер в 10 мл суспензии берут образец в 200 мкл с помощью пипетки и помещают в трубку микроцентрифуги емкостью 1,5 мл. Затем трубку центрифугируют с ускорением 10000 g (настольная микроцентрифуга фирмы "Eppendorf"), жидкость над осадком удаляют и трубке дают высохнуть в течение ночи при температуре 50oС. Затем трубку вновь взвешивают, чтобы определить вес высушенных микросфер внутри трубки.
F. Изготовление микросфер, наполненных таксолом
Для приготовления микросфер, наполненных таксолом, соответствующее количество таксола (в зависимости от процентного содержания таксола, которое необходимо инкапсулировать) помещают непосредственно в стеклянную пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл. Десять миллилитров соответствующего раствора полимера затем добавляют в пробирку, содержащую таксол и перемешивают до тех пор, пока таксол не растворится.
Аналогично по описанным выше стадиям (С)-(Е) могут быть получены микросферы, содержащие таксол.
Пример 6. Изготовление покрытия стента
Реагенты и оснастка, которые используются в описываемом эксперименте, включают медицинские стенты, приобретаемые у различных изготовителей (в частности, стенты фирмы "Strecker"), и держатель для них, стеклянные пробирки для сцинтилляции с крышками (из пластмассы, которые вставляются внутрь), распылитель для тонкослойной хроматографии, баллон с газообразным азотом, стеклянные пробирки (разного размера емкостью от 1 мл и более), стеклянные стаканы (разного размера), пипетку Пастора, пинцет, поликапролактон с молекулярным весом от 10000 до 20000 ("Polysciences"), таксол ("Sigma Chemical Co", Сент-Луис, штат Миссури, чистота 95%), сополимер этилена и винилацетата (промытый, как указано ранее), поли(d1)молочную кислоту с молекулярным весом от 15000 до 25000 ("Polysciences"), дихлорметан для жидкостной хроматографии высокого разрешения ("Fisher Scientific Co.").
А. Нанесение покрытия на стенты распылением
Следующая методика описывает стандартный метод с использованием гофрированного слоеного стента из металлической проволоки с диаметром 3 мм и длиной приблизительно 3 см. Для стентов большего диаметра используют большие количества растворов полимер/лекарство.
Отвешивают необходимое количество полимера непосредственно в стеклянную пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл и добавляют достаточное количество дихлорметана, чтобы получить раствор с концентрацией 2% (вес/об). Пробирки закрывают крышками и перемешивают смесь для растворения полимера (встряхивают вручную). Собирают стент с вертикальной ориентацией. Это можно осуществить, используя кусочек нейлона и привязывая стент к штативу. Помещают это устройство для поддержания стента на высоте 6-12 дюймов (15-30 см) от пола вытяжного шкафа на подставку (в частности, перевернутый стакан емкостью 2000 мл), чтобы можно было осуществить горизонтальное нанесение распылением. С помощью автоматической пипетки переносят нужный объем (минимум 5 мл) 2%-ного раствора полимера в отдельную пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл. Добавляют к раствору соответствующее количество таксола и растворяют, встряхивая закрытую колпачком пробирку.
Перед подготовкой к распылению колпачок с пробирки снимают и погружают корпус распылителя для тонкослойной хроматографии в раствор полимера. Следует отметить, что резервуар распылителя использовать нельзя: роль резервуара играет стеклянная пробирка емкостью 20 мл. Соединяют баллон с азотом с отверстием для ввода газа распылителя. Постепенно увеличивают давление до тех пор, пока не начнется атомизация и распыление. Замечают это давление и используют его в течение всей процедуры. Для нанесения покрытия на стент распыляют жидкость в течение 5 секунд, совершая круговые движения, а затем сушат в течение 15 секунд между каждой порцией распыления. Проводят 5 циклов распыления, вращая стент на 90 градусов и нанося каждый раз покрытие на часть стента. Операцию повторяют, пока не будут покрыты все стороны стента. Во время сушки газовую линию зажимают пальцем, чтобы предотвратить потерю распыляемого продукта. Распыление продолжают до тех пор, пока на стент не будет нанесено требуемое количество полимера. Это количество может зависеть от конкретного использования стента in vivo. Для определения нанесенного количества полимера стент взвешивают по окончании распыления и сушки стента. Вычитают исходный вес стента из конечного веса, это и составляет количество полимера (плюс таксол), нанесенного на стент. Стенты с покрытием хранят в закрытом контейнере.
В. Нанесение покрытия на стент окунанием
Следующая методика описывает стандартный метод с использованием гофрированного слоеного стента из металлической проволоки с диаметром 3 мм и длиной приблизительно 3 см. Для стентов большего диаметра используют большие количества растворов полимер/лекарство в больших по размеру пробирках.
В стеклянную пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл отвешивают 2 г сополимера этилена и винилацетата и добавляют 20 мл дихлорметана. Накрывают пробирку колпачком и оставляют на 2 час для растворения (часто встряхивая для ускорения процесса растворения). Прямо в пробирку емкостью 1 мл отвешивают известное количество таксола и добавляют 0,5 мл раствора полимера. С помощью стеклянной пипетки Пастера растворяют таксол, осторожно прокачивая раствор полимера. Как только таксол растворится, наклоняют пробирку практически горизонтально (так чтобы вязкий раствор полимера начал растекаться). С помощью пинцета помещают стент в трубку и опускают на дно, дают раствору полимера практически достигнуть горловины пробирки, наклоняя ее ниже горизонтального уровня и возвращая пробирку в исходное состояние с углом чуть больше горизонтального. Медленно вращая стент в пробирке, медленно извлекают стент (приблизительно в течение 30 секунд).
Для просушки устанавливают стент в вертикальное положение. Некоторые из закупоренных перфораций могут трескаться, так что в непрерывной пленке полимера могут возникнуть отверстия. Их можно устранить, повторяя ранее описанную процедуру, однако повторение процедуры также может привести к дальнейшему растрескиванию и получению в целом неровно сформированного покрытия полимера. В общем случае лучше окунать стент всего один раз и отрезать часть стента, где нет растрескиваний на перфорации. Стент с нанесенным методом окунания покрытием хранят в закрытом контейнере.
Пример 7. Изготовление хирургической "пасты"
Как указано ранее, в настоящем изобретении заявляется большое количество полимерсодержащих лекарственных композиций, которые могут быть использованы в различных клинических ситуациях. Например, композиции могут готовиться: (1) в виде "термопасты", которая наносится на нужное место в виде жидкости и затвердевает в твердый продукт нужной формы при специфической температуре (в частности, при температуре тела); (2) в виде аэрозоля (в частности, "наноаэрозоля"), который может наносится на нужное место как непосредственно, так и с помощью соответствующего устройства (в частности, эндоскопически), и который затем превращается в твердое вещество, прилипающее к тканям, на которые оно нанесено; (3) в виде плотно прилегающей, гибкой, эластичной пленки полимер-ингибитор развития кровеносных сосудов, которую наносят на нужное место как непосредственно, так и с помощью специального устройства и которая преимущественно прилегает к тому месту, на которое она нанесена; и (4) в виде жидкости, содержащей суспензию микросфер в подходящей среде-носителе, которую наносят на нужное место как непосредственно, так и с помощью специального устройства и которая оставляет в месте ее нанесения слой, составленный микросферами. Отдельные примеры каждого из этих вариантов осуществления изобретения более подробно представлены ниже.
А. Методика получения термопаст
Реагенты и оборудование, которое используется для проведения указанных далее экспериментов, включает стерильный стеклянный шприц (емкостью 1 мл), мешалку с обогреваемым столиком фирмы "Corning"), стеклянную трубку для сцинтилляции емкостью 20 мл, формы для отливки (в частности, кюветы, используемые в методе сканирующей дифференциальной калориметрии, емкостью 50 мкл или внутренняя часть колпачка трубки для центрифуги емкостью 50 мл), скальпель и пинцет, поликапролактон с молекулярным весом от 10000 до 20000 ("Polysciences", Уоррингтон, штат Пенсильвания, США) и таксол ("Sigma", минимальное содержание 95%).
Непосредственно в пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл отвешивают 5,00 г поликапролактона. Помещают пробирку в стакан емкостью 600 мл, содержащий 50 мл воды. Осторожно нагревают стакан до 65oС и поддерживают эту температуру в течение 20 минут, при этом полимер плавится. Тщательно смешивают известное количество таксола или другого ингибитора образования кровеносных сосудов с расплавленным полимером при 65oС. Выливают расплав полимера в предварительно подогретую (60oС) форму. Перемешивают с помощью шпателя, ускоряя процесс растворения. Дают форме остыть, при этом полимер затвердевает. Нарезают или разбивают полимер на мелкие кусочки (приблизительно размером 2Х2 мм). Эти кусочки должны входить в стеклянный шприц емкостью 1 мл. Извлекают поршень из шприца емкостью 1 мл (не удаляя колпачок с его конца) и кладут на весы. Показание весов обнуляют.
Отвешивают 0,5 г кусочков прямо в открытый конец, шприца. Устанавливают шприц вертикально (снизу находится колпачок) в стеклянном стакане емкостью 500 мл, содержащем дистиллированную воду с температурой 65oС (мешалка с обогреваемым столиком фирмы "Corning"), так чтобы вода не поступала в баллончик шприца. В этом устройстве полимер полностью расплавляется в течение 10 минут. После того, как кусочки полимера расплавились, баллончик извлекают из водяной бани, размещают его горизонтально и удаляют колпачок. Вставляют поршень в баллон шприца и сжимают расплав полимера в вязкую массу в тонком конце баллончика. Закрывают шприц колпачком и дают остыть до комнатной температуры.
Перед использованием шприц можно вновь нагреть до температуры 60oС и вводить содержимое в виде жидкости, которая затвердевает при температуре тела.
В. Методика получения наноаэрозоля
Наноаэрозоль представляет собой суспензию маленьких микросфер в солевом физиологическом растворе. Если микросферы являются очень маленькими (т.е. менее 1 мкм в диаметре), они образуют коллоидный раствор, так что суспензия не седиментирует в поле силы тяжести. Как более подробно поясняется ниже, суспензию микрочастиц с размерами от 0,1 до 1 мкм можно подготовить для нанесения на ткани с помощью ручного распылителя. Оборудование и материалы, которые могут быть использованы для получения наноаэрозоля, включают стакан (из кимакса или пирекса) емкостью 200 мл с водяной рубашкой, водяную баню с циркуляцией фирмы "Haake", размещаемую сверху мешалку и контроллер диаметром 2 дюйма (50,8 мм) (4-х лопастная мешалка пропеллерного типа из нержавеющей стали фирмы "Fisher"), стеклянный стакан емкостью 500 мл, магнитную мешалку с подогревом (от фирмы "Corning"), 4 X 50 мл полипропиленовые трубки для центрифуги (от фирмы "Nalgene"), стеклянные пробирки для сцинтилляции с вставляемыми внутрь пластиковыми крышечками, настольную центрифугу (от фирмы "Beckman"), высокоскоростную напольную центрифугу (модель JS 21 фирмы "Beckman"), аналитические весы фирмы "Mettler" (модель AJ 100, 0,1 мг), цифровые аналитические весы с верхней загрузкой фирмы "Mettler" (модель АЕ 163, 0,01 мг), автоматическую пипетку (от фирмы "Gilson"), стерильные наконечники пипеток, приводящийся в действие насосом пульверизатор (от фирмы ("Pfeiffer Pharmaceuticals") емкостью 20 мл, вытяжной шкаф с ламинарным потоком, поликапролактон (PCL) с молекулярным весом от 10000 до 20000 ("Polysciences", Уоррингтон, штат Пенсильвания, США), "промытый" (см, ранее) этиленвинилацетат (EVA), поли(d1)молочную кислоту (PLA) с молекулярным весом от 15000 до 25000 ("Polysciences"), поливиниловый спирт (PVA) с молекулярным весом от 124000 до 186000; гидролизованный на 99% ("Aldrich Chemical Co", Миллуоки, штат Висконсин, США), дихлорметан для жидкостной хроматографии высокого разрешения ("Fisher Scientific Co."), дистиллированную воду и стерильный солевой физиологический раствор (от компании "Becton and. Dickenson" или эквивалентный).
1. Приготовление 5%-ных (вес/об) растворов полимеров
В зависимости от приготавливаемого раствора полимера 1,00 г поликапролактона или пoли(dl)мoлoчнoй кислоты или по 0,50 пoли(dl)мoлoчнoй кислоты и промытого сополимера этилена и винилацетата отвешивают непосредственно в стеклянные пробирки для сцинтилляции емкостью 20 мл. С помощью мерного цилиндра добавляют 20 мл дихлорметана и пробирки плотно закрывают. Пробирки оставляют при комнатной температуре (25 oС) на один час или до тех пор, пока полимер не растворится (изредка можно встряхивать вручную). За процессом растворения полимера можно следить визуально; раствор должен быть прозрачным. Раствор можно хранить при комнатной температуре и использовать в течение двух недель.
2. Получение 3,5%-ного (вес/об) маточного раствора поливинилового спирта
Раствор можно получить по приведенной ниже методике или путем разбавления 5%-ного (вес/об) маточного раствора поливинилового спирта, приготовленного для получения микросфер (см. Пример 8). Если коротко, то 17,5 г поливинилового спирта непосредственно отвешивают в стеклянный стакан емкостью 600 мл. Добавляют 500 мл дистиллированной воды. Помещают в стакан, покрытый тефлоном, якорь мешалки длиной 3 дюйма (76,2 мм). Стакан накрывают покровным стеклом, чтобы уменьшить потери, вызванные испарением. Стакан помещают в стеклянный стакан емкостью 2000 мл, содержащий 300 мл воды. Он играет роль водяной бани. Поливиниловый спирт перемешивают со скоростью 300 об/мин при температуре 85oС (на мешалке с подогревом фирмы "Corning") в течение 2 час или до полного растворения. Растворение поливинилового спирта можно определить визуально; раствор должен быть прозрачным. Раствор переносят в стеклянный контейнер с завинчивающейся крышкой и хранят при температуре 4oС не более двух месяцев. Однако перед использованием или разбавлением раствор необходимо нагреть до комнатной температуры.
3. Методика получения наноаэрозоля
Размещают устройство для перемешивания в вытяжном шкафу. Помещают 100 мл 3,5%-ного раствора поливинилового спирта в стакан с водяной рубашкой емкостью 200 мл. Водяную баню фирмы "Haake" с циркулирующей водой подсоединяют к этому стакану и дают температуре содержимого установиться на уровне 27oС (+/-1oС) в течение 10 минут. Устанавливают стартовую скорость верхней мешалки 3000 об/мин (+/- 200 об/мин). Лопасти мешалки наполовину помещают в раствор поливинилового спирта и включают мешалку. В перемешиваемый раствор поливинилового спирта добавляют по каплям в течение 2 минут 10 мл раствора полимера (раствор полимера используют в зависимости от типа изготавливаемого наноаэрозоля) с помощью автоматической пипетки емкостью 5 мл. Через 3 минуты устанавливают скорость перемешивания 2500 об/мин (+/- 200 об/мин) и перемешивают в течение 2,5 час. Через 2,5 час лопасти мешалки вынимают из препарата микросфер и промывают их 10 мл дистиллированной воды, так чтобы промывочный раствор стекал в препарат микросфер.
Затем препарат микросфер выливают в стакан емкостью 500 мл. Водяную рубашку промывают 70 мл дистиллированной воды, которой также дают стечь в препарат микросфер. 180 мл препарата микросфер затем перемешивают стеклянной палочкой и равными частями выливают в четыре трубки для центрифуги из полипропилена емкостью 50 мл. Трубки закрывают крышками. Центрифугируют в течение 10 минут с ускорением 10000 g (+/-1000 g). Для удаления 45 мл раствора поливинилового спирта от каждой таблетки микросфер применяют автоматическую пипетку емкостью 5 мл. В каждую пробирку для центрифугирования затем добавляют по пять миллилитров дистиллированной воды и перемешивают, чтобы ресуспендировать микросферы. Затем четыре суспензии микросфер сливают в одну трубку для центрифугирования вместе с 20 мл дистиллированной воды. Чтобы промыть микросферы, центрифугируют препарат наноаэрозоля в течение 10 минут с ускорением 10000 g (+/- 1000 g). Удаляют жидкость над таблеткой из микросфер. Добавляют 40 мл дистиллированной воды и перемешивают для ресуспендирования микросфер. Процедуру повторяют еще дважды, т.е. всего три раза. Проводят четвертую промывку, однако используют для ресуспендирования микросфер лишь 10 мл (не 40 мл) дистиллированной воды. После четвертой промывки препарат микросфер переносят в заранее взвешенную стеклянную пробирку для сцинтилляции.
Пробирку закрывают крышкой и оставляют на 1 час при комнатной температуре (25oС), давая возможность микросферам с диаметром 2 мкм и 3 мкм осесть под действием силы тяжести. Через 1 час верхние 9 мл суспензии удаляют, используя автоматическую пипетку емкостью 5 мл. Помещают эти 9 мл в стерильную трубку для центрифуги емкостью 50 мл, снабженную крышкой. Центрифугируют суспензию с ускорением 10000 g (+/-1000 g) в течение 10 минут. Жидкость над осадком сливают и вновь суспендируют таблетку в 20 мл стерильного солевого физиологического раствора. Центрифугируют суспензию с ускорением 10000 g (+/-1000 g) в течение 10 минут. Жидкость над осадком сливают и вновь суспендируют таблетку в стерильном солевом физиологическом растворе. Количество используемого физиологического раствора зависит от конечной требуемой концентрации (обычно 10% вес/об). Тщательно промывают устройство для получения аэрозоля стерильным солевым физиологическим раствором и добавляют суспензию наноаэрозоля в распылитель.
С. Изготовление наноаэрозоля, содержащего таксол
Для приготовления наноаэрозоля. содержащего таксол, используют таксол фирмы "Sigma" (с чистотой 95%). Для получения маточного раствора полимер/лекарство отвешивают соответствующее количество таксола прямо в стеклянную пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл. Это количество определяют в зависимости от процентного, содержания таксола в наноаэрозоле. Например, если требуется получить наноаэрозоль, содержащий 5% таксола, то отвешивают 25 мг таксола, поскольку количество добавляемого полимера составляет 10 мл 5%-ного раствора в дихлорметане (см. следующую стадию).
Добавляют 10 мл 5%-наго раствора подходящего полимера в пробирку, содержащую таксол. Пробирку закрывают и перемешивают механически или вручную, чтобы растворить таксол (проверяют полноту растворения таксола визуально). На пробирку наклеивают этикетку, на которой указывают дату изготовления. Препарат должен быть использован в тот же день.
Повторяют описанные выше процедуры, взяв вместо раствора полимера маточный раствор, полимер/лекарство (в частности, таксол).
D. Методика получения пленки
Термин "пленка" относится к полимеру, полученному в одном из множества геометрических форм. Пленка может быть тонким эластичным листом полимера или изготовленным из полимера диском с диаметром 2 мм. Форму пленки подбирают таким образом, чтобы ее можно было поместить на ткань, с тем чтобы инкапсулированное лекарство выделялось из полимера в окружающие ткани в течение длительного периода времени. Пленки могут быть получены разными способами, в том числе, например, отливкой и пульверизацией.
В методе получения пленки отливкой полимер либо расплавляют и выливают в форму, либо растворяют в дихлорметане и выливают в форму. Затем полимер, соответственно, либо затвердевает по мере охлаждения, либо
затвердевает по мере испарения растворителя. В методе получения пленки пульверизацией полимер растворяют в растворителе и разбрызгивают на стекло и при испарении растворителя полимер затвердевает в виде пленки на стекле. Повторным разбрызгиванием можно получить слой полимера на стекле, который можно снять со стекла.
Реагенты и оснастка, которая применяется в указанных экспериментах, включают маленькие стаканчики, мешалку с подогреваемым столиком фирмы "Corning", формы для отливки (в частности, колпачки трубок для центрифуги емкостью 50 мл) и устройство для закрепления форм, пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл с колпачком, который вставляется внутрь, распылитель для тонкослойной хроматографии, баллон с газообразным азотом, поликапролактон с молекулярным весом от 10000 до 20000 ("Polysciences"), таксол ("Sigma", содержание основного вещества 95%), этанол, "промытый" (см. ранее) этиленвинилацетат, поли(d1)молочную кислоту с молекулярным весом от 15000 до 25000 ("Polysciences"), дихлорметан для жидкостной хроматографии высокого разрешения ("Fisher Scientific Co.").
1. Методика получения пленок - формовка из расплава
Непосредственно в маленький стеклянный стакан отвешивают известное количество поликапролактона. Помещают стакан в больший стакан, содержащий воду (играет роль водяной бани) и на 15 минут, или пока полимер не расплавится, помещают на горячую плитку с температурой 70oС. В расплавленный полимер добавляют известное количество лекарства и смесь тщательно перемешивают. Чтобы облегчить образование дисперсии лекарства в расплаве поликапролактона, лекарство можно растворить/суспендировать в небольшом объеме (<10% от объема расплава поликапролактона) абсолютного этанола. Полученную суспензию в этаноле затем смешивают с расплавленным полимером. Выливают расплав полимера в форму и дают остыть. После охлаждения пленку хранят в контейнере.
2. Методика получения пленок - формовка из раствора
Отвешивают известное количество поликапролактона непосредственно в пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл и добавляют необходимое количество дихлорметана, так чтобы концентрация составила 10% (вес/об). Закрывают пробирку пробочкой и перемешивают. Добавляют достаточное количество таксола, чтобы получить нужную конечную концентрацию таксола. Для растворения таксола пробирку встряхивают вручную или осуществляют перемешивание механически. Дают раствору отстояться в течение одного часа (чтобы уменьшить количество пузырьков газа) и медленно выливают в форму. Используют форму в зависимости от необходимой конфигурации изделия. Форму на ночь помещать в вытяжной шкаф, и дихлорметан испаряется. Пленку либо оставляют в форме, либо отслаивают и хранят в закрытом контейнере.
3. Методика получения пленок - разбрызгивание
Отвешивают достаточное количество полимера непосредственно в пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл и добавляют необходимое количество дихлорметана, так чтобы концентрация составила 2% (вес/об). Закрывают пробирку пробочкой и перемешивают, чтобы растворить полимер (встряхивают вручную). Собирают формы в вертикальном положении в подходящем держателе и помещают под вытяжной шкаф, размещают устройство для закрепления форм на высоте 6-12 дюймов (15-30 см) над поверхностью вытяжного шкафа на подходящей подставке (в частности перевернутом стеклянном стакане емкостью 2000 мл), чтобы облегчить горизонтальное разбрызгивание. С помощью автоматической пипетки переносят подходящий объем (минимум 5 мл) 2%-ного раствора полимера в отдельную пробирку для сцинтилляции емкостью 20 мл. К раствору добавляют достаточное количество таксола и растворяют его, встряхивая закрытую колпачком пробирку вручную. Перед подготовкой к распылению колпачок с пробирки снимают и погружают корпус распылителя для тонкослойной хроматографии в раствор полимера. Следует отметить, что резервуар самого распылителя использовать нельзя: роль резервуара играет стеклянная пробирка емкостью 20 мл.
Соединяют баллон с азотом с отверстием для ввода газа-распылителя. Постепенно увеличивают давление до тех пор, пока не начнется атомизация и распыление. Замечают это давление и используют его в течение всей процедуры. Для разбрызгивания формы распыляют жидкость в течение 5 секунд, совершая круговые движения, а затем сушат в течение 15 секунд между каждой порцией распыления. Во время сушки газовую линию зажимают пальцем, чтобы предотвратить потерю распыляемого продукта. Распыление продолжают до тех пор, пока на форму не будет нанесено требуемое количество полимера.
Е. Методика получения нанопасты
Нанопаста представляет собой суспензию микросфер в гидрофильном геле. В соответствии с одним из аспектов настоящего изобретения, гель или пасту можно намазать на ткани в качестве метода размещения наполненных лекарством микросфер вблизи ткани-мишени. Поскольку она имеет водную основу, паста вскоре разбавляется циркулирующими внутри организма жидкостями, ухудшая прилипаемость пасты и способствуя осаждению микросфер на близлежащих тканях. Поэтому все количество инкапсулированного лекарства стремятся нанести как можно ближе к тканям-мишеням.
Реагенты и оснастка, которые используют в указанных экспериментах, включают стеклянные стаканы, карбопол 925 (для использования в фармацевтике, "Goodyear Chemical. Co."), дистиллированную воду, раствор гидроксида натрия (1 М) в воде, раствор гидроксида натрия (5 М) в воде, микросферы размером в интервале от 0,1 мкм до 3 мкм, суспендированные в воде с концентрацией 20% (см. ранее).
1. Приготовление 5%-ного геля карбопола
Достаточное количество карбопола добавляют в 1 М раствор гидроксида натрия, чтобы получился 5%-ный (вес/об) раствор. Чтобы растворить карбопол в 1 М растворе гидроксида натрия, оставляют смесь приблизительно на 1 час. В течение указанного времени смесь перемешивают стеклянной палочкой. Через час измеряют рН смеси. Низкое значение рН свидетельствует о том, что карбопол растворился не полностью. Необходимо, чтобы величина рН составляла 7,4. Для того, чтобы подогнать значение рН, используют 5 М раствор гидроксида натрия. Эту процедуру осуществляют очень медленно, добавляя по каплям 5 М раствор гидроксида натрия в смесь, перемешивают и измеряют величину рН. Чтобы довести рН до величина 7,4, обычно требуется около одного часа. Как только величина рН 7,4 достигнута, закрывают гель и оставляют его на 2-3 час. После этого проверяют, равно ли значение рН 7,4. Если оно изменилось, то вновь доводят его до величины 7,4, добавляя 5 М раствор гидроксида натрия. Оставляют гель еще на несколько часов, чтобы убедиться, что рН стабилизирован на уровне 7.4. Повторяют процедуру до тех пор, пока не будет достигнуто требуемое значение рН и величина его не будет стабильной. После этого гель следует использовать в течение одной следующей недели для приготовления нанопасты.
2. Методика получения нанопасты
Добавляют достаточное количество микросфер с размерами в интервале 0,1-3 мкм в воду для получения 20%-ной суспензии микросфер. Помещают 8 мл 5%-ного геля карбопола в стеклянный стакан. В стакан добавляют 2 мл 20%-ной суспензии микросфер. Используя стеклянную палочку или шпатель, смесь перемешивают, чтобы тщательно распределить микросферы внутри геля. Обычно это занимает 30 минут. Как только микросферы распределились внутри геля, смесь помещают в сосуд на хранение. Хранят сосуд при температуре 4oС. Нанопасту следует использовать в течение месяца.
Пример 8. Контролируемое выделение таксола из микросфер, изготовленных из смеси сополимера этилена и винилацетата и поли(d1)молочной кислоты. Испытания in vivo микросфер в анализе с использованием хорионалантоисной мембраны цыпленка
В этом примере описывается получение наполненных таксолом микросфер, изготовленных из смеси биоразлагаемого полимера поли(d1)молочной кислоты и небиоразлагаемого сополимера этилена и винилацетата. Кроме того, в условиях in vitro показана скорость выделения и ингибируюшая активность таксола. выделившегося из микросфер, нанесенных на хорионалантоисную мембрану, по отношению к развитию кровеносных сосудов.
Реагентами, которые используют в этих экспериментах, являются таксол. который покупают у компании "Sigma Chemical Co." (Сент-Луис, штат Миссури), поли(d1)молочная кислота с молекулярным весом от 15000 до 25000 и полиэтиленвинилацетат (60% винилацетата) (которые покупают у компании "Polysciences", Уоррингтон, штат Пенсильвания), поливиниловый спирт с молекулярным весом от 124000 до 186000, гидролизованный на 99% (покупают у компании "Aldrich Chemical Co.", Миллуоки, штат Висконсин) и дихлорметан для жидкостной хроматографии высокого разрешения ("Fisher Scientific Co."). Всюду используют дистиллированную воду.
А. Приготовление микросфер
Микросферы в основном получают по методике, приведенной в Примере 8, используя способ с испарением растворителя. Если коротко, то получают 5%-ные (вес/об) растворы полимера в 20 мл дихлорметана из смесей сополимер этилена и винилацетата: поли(d1) молочная кислота с соотношениями от 35:65 до 90:10. К 5 мл 2,5%-ного (вес/об) раствора поливинилового спирта в воде, помещенного в пробирку емкостью 20 мл, по каплям при перемешивании добавляют 1 мл раствора полимера. Шесть аналогичных пробирок устанавливают в аппарат для растворения фирмы "Vanderkamp" с расположенными вверху мешалками и перемешивают со скоростью 200 об/мин. Температуру в пробирках в течение 15 минут повышают от комнатной до 40oС и выдерживают при указанной температуре в течение 2 час. Пробирки центрифугируют с ускорением 500 g и микросферы трижды промывают водой. Для некоторых смесей сополимер этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота образцы микросфер агрегируют при проведении стадии промывки вследствие удаления диспергирующего или эмульгирующего агента - поливинилового спирта. Указанное влияние агрегации можно полуколичественно оценить, поскольку агрегированные микросферы слипаются, и полученная полимерная масса плавает на поверхности промывных вод. Этот слой полимера на поверхности сливают при проведении промывок, а оставшиеся в виде таблетки микросферы взвешивают. Процент агрегации определяют из соотношения:
Figure 00000002

Наполненные таксолом микросферы (0,6 % вес/вес) получают, растворяя таксол в 5%-ном (вес/об) растворе полимера в дихлорметане. Используют полимерную смесь сополимер этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота с соотношением 50: 50. Фракции микросфер с "большим" размером и фракции микросфер с "маленьким" размером готовят, добавляя по каплям раствор таксол/полимер в 2,5%-ный раствор поливинилового спирта и 5%-ный раствор поливинилового спирта, соответственно. Дисперсии перемешивают при температуре 40oС со скоростью 200 об/мин в течение 2 час, центрифугируют и промывают 3 раза водой, как указано ранее. Микросферы сушат на воздухе, и размер частиц образца оценивают с помощью оптического микроскопа, снабженного предметным столиком. Для каждого образца определяют 300 микросфер. Готовят контрольные микросферы (без таксола) и размер их определяют, как описано ранее.
В. Эффективность инкапсулирования
Известные количества содержащих таксол микросфер растворяют в 1 мл дихлорметана, добавляют 20 мл 40%-ного раствора ацетонитрила в воде с температурой 50oС и перемешивают до тех пор, пока дихлорметан не испарится. Концентрацию таксола в 40%-ном ацетонитриле определяют методом жидкостной хроматографии высокого разрешения, используя в качестве подвижной фазы смесь вода: метанол: ацетонитрил (37:5:58) со скоростью подачи I мл/мин (применяют изократический насос фирмы "Beckman"), колонку С8 с обращенной фазой (фирмы "Beckman") и контролируют с помощью УФ детектора на длине волны 232 нм. Чтобы определить эффективность высвобождения при использовании указанной методики экстракции, известные количества таксола в интервале 100-1000 мкг растворяют в 1 мл дихлорметана и подвергают по три образца той же процедуре экстракции, как описано ранее. Высвобождение лекарства всегда составляет более 85% и величины эффективности инкапсулирования соответствующим образом корректируются.
С. Изучение выделения лекарства
В снабженные закручивающейся крышкой стеклянные трубки емкостью 15 мл помещают 10 мл 10 мМ забуференного фосфатом физиологического раствора с рН 7,4 и 35 мг содержащих таксол микросфер. Трубки встряхивают при температуре 37oС и через определенные промежутки времени центрифугируют с ускорением 1500 g в течение 5 минут и жидкость над осадком сохраняют для анализа. Таблетки микросфер вновь суспендируют в свежем забуференном фосфатом физиологическом растворе (10 мл) при температуре 37oС и вновь помещают в инкубатор. Концентрации таксола определяют путем экстракции в I мл дихлорметана с последующим упариванием досуха в токе азота, растворением в 1 мл 40%-ного раствора ацетонитрила в воде и анализом с использованием жидкостной хроматографии высокого разрешения, как описано ранее.
D. Сканирующая электронная микроскопия
Микросферы помещают на держатель образцов, напыляют на них золото и получают микрофотографии с помощью сканирующего электронного микроскопа Philips 501B с рабочим напряжением 15 кВ.
Е. Изучение хорионалантоисной мембраны
До получения безоболочечной культуры оплодотворенные эмбрионы цыплят выдерживают в инкубаторе 4 дня. Содержимое яиц выдерживают 2 дня в инкубаторе при относительной влажности 90% и концентрации углекислого газа 3%. На шестой день инкубации аликвоты по 1 мг микросфер, содержащих 0,6% таксола, и контрольных микросфер (без таксола) помещают непосредственно на поверхность хорионалантоисной мембраны. По прошествии двух дней исследуют сосудистую систему с использованием стереомикроскопа, сопряженного с видеокамерой; сигналы видеокамеры передают на компьютер и делают распечатку.
F. Результаты
Микросферы, полученные из 100%-ного сополимера этилена и винилацетата легко суспендируются в растворе поливинилового спирта, однако энергично агрегируют и коалесцируют или слипаются при последующей промывке в воде для удаления поливинилового спирта. Смешивание сополимера этилена и винилацетата с возрастающими пропорциями поли(d1)молочной кислоты приводит к получению микросфер, которые обладают меньшей тенденцией к агрегации и коалесценции при промывке водой, что показано на фиг. 15А. Смесь 50:50 сополимер этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота образует микросферы, обладающие хорошей физической стабильностью, т.е. микросферы остаются дискретными и хорошо суспендируются, при этом агрегация и коалесценция минимальны.
В образцах микросфер с "маленькими" размерами фракций диапазон размеров >95% микросфер (по весу) составляет от 10 до 30 микрон, а в образцах микросфер с "большими" размерами фракций диапазон размеров >95% микросфер (по весу) составляет от 30 до 100 микрон. Отдельные примеры микрофотографий, полученных с помощью сканирующего электронного микроскопа, для наполненных таксолом микросфер 50:50 сополимера этилена и винилацетата:поли((d1)молочная кислота в "маленьком" и "большом" диапазоне размеров приведены на фиг. 15В и 15С, соответственно. Микросферы являются сферическими и имеют гладкую поверхность; на поверхности микросфер не видно присутствия лекарства. Эффективность наполнения микросфер 50:50 сополимера этилена и винилацетата: поли(d1)молочная кислота составляет 95-100% при изначальной концентрации таксола в интервале от 100 до 1000 мг таксола на 50 мг полимера. Заметной разницы (t-тест Стьюдента, p<0,05) между эффективностью инкапсулирования "маленьких" и "больших" микросфер не отмечается.
Время высвобождения таксола из 0,6%-ных (вес/об) наполненных 50:50 сополимера этилена и винилацетата: поли(d1)молочной кислоты приведены на фиг. 15D для "маленьких" размеров (незакрашенные кружки) и "больших" размеров (закрашенные кружки) микросфер. Исследования скорости высвобождения проводят, трижды повторяя эксперименты для трех трубок. Профили высвобождения лекарства показывают две фазы: быструю первичную фазу высвобождения таксола или "взрывную" фазу, которая продолжается в течение первых четырех дней для микросфер обоих диапазонов размеров микросфер. За ней следует фаза значительно более медленного высвобождения. Не отмечается значительных различий в скоростях высвобождения между "маленькими" и "большими" микросферами. 10-13% от общего количества содержащегося в микросферах таксола высвобождается в течение 50 дней.
Микросферы, наполненные таксолом (0,6% вес/об), исследуют с помощью анализа с использованием хорионалантоисной мембраны, результаты которого представлены на фиг. 15Е. Микросферы, полненные таксолом. высвобождают достаточное количество лекарства, чтобы создать лишенную сосудов зону в окружающих тканях (фиг. 15F). Следует отметить, что к микросферам (" MS" на фиг. 15Е и 15F) непосредственно примыкает зона, в которой полностью отсутствуют кровеносные сосуды (зона 1); далее от микросфер располагается область с разрушенными нефункционирующими капиллярами (зона 2); и лишь на расстоянии приблизительно 6 мм от микросфер капилляры возвращаются к нормальному состоянию. В хорионалантоисных мембранах, обработанных контрольными микросферами (таксол отсутствует), сохраняется нормальная архитектура сети капилляров.
Обсуждение
Химиоэмболизация артерий является инвазивным хирургическим способом. Таким образом, в идеальном случае, химиоэмболитические составы, содержащие лекарства, подавляющие развитие сосудов, или противораковые лекарства, такие как таксол, высвобождают лекарство рядом с опухолью с концентрациями, достаточными для активного действия в течение длительного периода времени - порядка нескольких месяцев. Сополимер этилена и винилацетата представляет собой совместимый с тканями неразлагаемый полимер, который часто используют для контролируемой доставки макромолекул в течение длительных периодов времени (> 100 дней).
Сополимер этилена и винилацетата первоначально выбирают в качестве полимерного биоматериала для приготовления микросфер с растворенным в полимерной матрице таксолом. Однако микросферы, полученные с использованием 100%-ного сополимера этилена и винилацетата практически полностью агрегируют и коалесцируют при промывке.
Полимеры и сополимеры на основе молочной кислоты и гликолевой кислоты являются физиологически инертными и биосовместимыми и при гидролизе разлагаются на токсикологически приемлемые продукты. Сополимеры молочной кислоты и гликолевой кислоты разлагаются гораздо быстрее, чем сополимер этилена и винилацетата, и наполненные лекарством микросферы, приготовленные с использованием указанных сополимеров, как правило, непригодны для продолжительного контролируемого высвобождения лекарства в течение нескольких месяцев. Dollinger и Sawan смешали поли(d1)молочную кислоту с сополимером этилена и винилацетата и показали, что время разложение поли(d1молочной кислоты возрастает по мере возрастания доли сополимера этилена и винилацетата в смеси.
На фиг. 15А показано, что увеличение доли поли(d1)молочной кислоты в смеси сополимер этилена и винилацетата: поли(d1)молочная кислота приводит к уменьшению степени агрегации суспензии микросфер. Смеси с содержанием поли(d1)молочной кислоты в матрице сополимер этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота дают физически стабильные суспензии микросфер в воде или забуференном фосфатом солевом физиологическом растворе. Смесь 50:50 сополимер этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота выбирают для проведения дальнейших исследований.
Фракции микросфер с разными диапазонами размеров могут быть получены путем изменения концентрации эмульгатора - поливинилового спирта - в водной фазе. "Маленькие" микросферы получаются при большей концентрации поливинилового спирта, равной 5% (вес/об), в то время как "большие" микросферы получаются при концентрации поливинилового спирта, равной 2,5% (вес/об). Все остальные переменные при синтезе остаются одними и теми же для фракций микросфер обоих размеров. Большие концентрации эмульгатора приводят к более вязкой водной дисперсионной среде и к образованию более мелких капелек полимер/таксол/дихлорметан, эмульгированных в водной фазе и, таким образом, к более мелким микросферам. Наполненные таксолом микросферы содержат от 95 до 100% исходного количества таксола, добавленного в органическую фазу, инкапсулированную в твердых микросферах. Низкая растворимость таксола в воде способствует его перераспределению в органическую фазу, содержащую полимер.
Скорости высвобождения таксола из микросфер 50:50 сополимера этилена и винилацетата: поли(d1)молочная кислота являются очень низкими, так что в течение 50 дней выделяется менее 15% содержащегося таксола. Первичная фаза взрывного высвобождения лекарства может быть вызвана диффузией лекарства из приповерхностной области микросфер (расположенных недалеко от поверхности микросфер).
Механизм высвобождения лекарства из неразлагаемых полимерных матриц, таких как сополимер этилена и винилацетата, как полагают, включает диффузию воды сквозь дисперсную фазу лекарства в полимере, растворение лекарства и диффузию растворенного вещества через ряд взаимопроникающих наполненных жидкостью пор. Смеси сополимера этилена и винилацетата и поли(d1)молочной кислоты, как было показано, являются несмешивающимися и образуют две фазы в широком диапазоне от 30 до 70% сополимера этилена и винилацетата в поли(d1)молочной кислоте. При изучении разложения забуференного фосфатом физиологического солевого раствора при 37oС вслед за индукционным или скрытым периодом поли(d1)молочная кислота гидролитически разлагается и подвергается эрозии из полимерной матрицы сополимера этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота, оставляя неактивный скелет, похожий на губку. Хотя индукционный период и скорость разложения и эрозии поли((d1)молочной кислоты в полимерной матрице зависят от пропорции поли(d1)молочной кислоты в матрице и от процесса получения. Поли(d1)молочная кислота практически не теряется в течение 40-50 дней.
Хотя некоторая эрозия поли(d1)молочной кислоты из микросфер 50:50 сополимер этилена и винилацетата:поли(d1)молочная кислота могла произойти в течение 50 дней при исследовании скорости высвобождения лекарства в условиях in vitro (фиг. 15С), наиболее вероятно, что основным механизмом высвобождения лекарства из смеси полимеров является диффузия растворенного вещества сквозь сеть пор в полимерной матрице.
По завершении исследования скорости высвобождения лекарства микросферы анализируют на остаточное содержание лекарства. Процентное содержание оставшегося таксола, сохраняющееся в течение 50 дней инкубации образца микросфер составляет 94% (+/-9%) и 89% (+/-12%) для фракций микросфер с "большими" и "маленькими" размерами.
Микросферы, наполненные 0,6 мг на 1 г полимера (0,6%), обеспечивают активное подавление процесса развития кровеносных сосудов при размещении на хорионалантоисной мембране цыпленка (фиг. 15Е и 15F).
Пример 9. Инкапсулирование таксола в микросферах поли(ε-капролактона). Подавление развития кровеносных сосудов наполненными таксолом микросферами в анализе с использованием хорионалантоисной мембраны
В этом примере оценивается профиль скорости выделения таксола из биоразлагаемых микросфер поли(ε-капролактона) в условиях in vitro и показана ингибируюшая активность таксола, выделившегося из микросфер, при нанесении на хорионалантоисную мембрану, по отношению к развитию кровеносных сосудов.
Реагентами, которые используют в этих экспериментах, являются поли(ε-капролактон) с молекулярным весом 35000-45000, который покупают у компании "Polysciences" (Уоррингтон, штат Пенсильвания), дихлорметан ("Fisher Scientific Co.", Канада), поливиниловый спирт (PVP) с молекулярным весом 12000-18000, гидролизованный на 99% (покупают у компании "Aldrich Chemical Co. ". Миллуоки, штат Висконсин) и таксол от компании "Sigma Chemical Co. " (Сент-Луис, штат Миссури). Если специально не оговаривается, все реактивы используют без дальнейшей очистки, всюду применяют дистиллированную воду.
А. Приготовление микросфер
Микросферы в основном получают по методике, приведенной в Примере 8, используя способ с испарением растворителя. Если коротко, то микросферы с 5%-ным (вес/вес) содержанием таксола получают, растворяя 10 мг таксола и 190 мг поликапролактона в 2 мл дихлорметана, добавляя 100 мл 1%-ного раствора поливинилового спирта PVP и перемешивая со скоростью 1000 об/мин при температуре 25oС в течение 2 час. Суспензию микросфер центрифугируют с ускорением 1000 g в течение 10 минут ("Beckman GPR"), жидкость над осадком сливают и микросферы трижды промывают водой, сушат на воздухе и хранят при комнатной температуре. Контрольные, микросферы (без таксола) получают, как указано ранее, получают также микросферы, содержащие 1% и 2% таксола. Размер микросфер определяют с помощью оптического микроскопа, снабженного предметным столиком.
В. Эффективность инкапсулирования
Известные количества содержащих таксол микросфер (приблизительно 5 мг) растворяют в 8 мл ацетонитрила и для осаждения полимера добавляют 2 мл воды. Смесь центрифугируют с ускорением 1000 g в течение 10 минут и количество инкапсулированного таксола определяют по поглощению жидкости над осадком с помощью УФ спектрометра (спектрофотометр с диодной матрицей Hewlett-Packard 845 2А) на длине волны 232 нм.
С. Изучение выделения лекарства
Приблизительно 10 мг содержащих таксол мембран суспендируют в 20 мл 10 мМ забуференного фосфатом физиологического раствора с рН 7,4 в снабженных закручивающейся крышкой стеклянных пробирках. Пробирки встряхивают, переворачивая вверх-вниз при температуре 37oС и через определенные промежутки времени удаляют 19,5 мл жидкости над осадком (предварительно дав микросферам осесть на дно), отфильтровывают через мембранный фильтр с размерами пор 0,45 мм и сохраняют фильтрат для анализа на таксол. В каждую пробирку доливают равный объем забуференного фосфатом физиологического раствора, чтобы поддерживать одинаковые условия осаждения в течение всего эксперимента. Фильтрат экстрагируют 3 Х 1 мл дихлорметаном, экстракты в дихлорметане упаривают досуха в токе азота, вновь растворяют в 1 мл ацетонитрила и анализируют методом жидкостной хроматографии высокого разрешения, используя в качестве подвижной фазы смесь вода: метанол: ацетонитрил (37:5:58) со скоростью подачи 1 мл/мин (изократический насос фирмы "Beckman"), колонку С8 с обращенной фазой ("Beckman") и УФ детектор (Shimadzu SPD А) на длине волны 232 нм.
D. Изучение хорионалантоисной мембраны
До получения безоболочечной культуры оплодотворенные эмбрионы цыплят выдерживают в инкубаторе 4 дня. На шестой день инкубации аликвоты по 1 мг микросфер, содержащих 5% таксола, и контрольных микросфер (без таксола) помещают непосредственно на поверхность хорионалантоисной мембраны. По прошествии двух дней исследуют сосудистую систему с использованием стереомикроскопа, сопряженного с видеокамерой; сигналы видеокамеры передают на компьютер и делают распечатку.
Е. Сканирующая электронная микроскопия
Микросферы помещают на держатель образцов, напыляют на них золото и получают микрофотографии с помощью сканирующего электронного микроскопа Philips 501B с рабочим напряжением 15 кВ.
F. Результаты
Диапазон размеров для образцов микросфер лежит в интервале 30-100 мкм, хотя во всех наполненных таксолом и контрольных микросферах некоторые микросферы выпадают из этого диапазона. Эффективность наполнения поликапролактоновых микросфер таксолом всегда составляет более 95% для всех изученных лекарств, сканирующая электронная микроскопия показывает, что все микросферы имеют сферическую форму с шероховатой и покрытой ямками поверхностью. На поверхности микросфер не наблюдается следов твердого лекарства.
Выделение таксола с течением времени из поликапролактоновых микросфер, наполненных 1%, 2% и 5% таксола, показано на фиг. 16А. Профили скорости высвобождения показывают две фазы. Для всех нагрузок лекарства существует первоначальная быстрая или "взрывная фаза" выделения таксола. Взрывная фаза продолжается в течение 1-2 дней для концентраций таксола I % и 2% и 3-4 дня для 5%-ных микросфер. За первой фазой быстрого выделения следует фаза относительно медленного высвобождения лекарства. Для микросфер, содержащих 1% или 2% таксола, выделения таксола через 21 день не наблюдается. При нагрузке таксола, равной 5%, микросферы через 21 день выделяют 20% от общего содержания лекарства.
На фиг. 16В показана хорионалантоисная мембрана, обработанная контрольными поликапролактоновыми микросферами и на фиг. 16С показана обработка 5%-ными микросферами, загруженными таксолом. Хорионалантоисная мембрана с контрольными микросферами показывает обычную архитектуру сети капилляров. Хорионалантоисная мембрана, обработанная поликапролактоновыми микросферами, наполненными таксолом, показывает явно выраженную регрессию сосудов в зонах, в которых сеть капилляров отсутствует.
G. Обсуждение
Метод получения наполненных таксолом микросфер испарением растворителя позволяет добиться очень высокой эффективности инкапсулирования таксола, составляющей 95-100%. Это объясняется плохой растворимостью таксола в воде и его гидрофобностъю, которая способствует перераспределению таксола в фазу органического растворителя, содержащего полимер.
Двухфазный профиль выделения таксола является типичным для высвобождения многих лекарств из биоразлагаемых полимерных матриц. Поли(ε-капролактон) представляет собой алифатический полиэфир, который может разлагаться при гидролизе в физиологических условиях, не токсичен и совместим с тканями. Разложение поликапролактона протекает заметно медленнее, чем разложение интенсивно изучаемых полимеров и сополимеров молочной и гликолевой кислот, а потому он удобен для разработки систем для продолжительной доставки лекарства. Первоначальная фаза или взрывная фаза высвобождения таксола, как полагают, вызвана диффузией лекарства из приповерхностной области микросфер (расположенных недалеко от поверхности микросфер). Высвобождение таксола во второй (медленной) стадии профиля высвобождения, вероятно, не связано с разложением или эрозией поликапролактона, поскольку исследования показывают, что в условиях in vitro в воде не наблюдается значительной потери веса или эрозии поверхности поликапролактона в течение 7,5 недель. Более медленная фаза выделения таксола, вероятно, связана с растворением лекарства внутри наполненных жидкостью пор в полимерной матрице и диффузией через поры. Большая скорость высвобождения при больших нагрузках таксола, вероятно, является результатом более интенсивной сети пор внутри полимерной матрицы.
Было показано, что микросферы, содержащие 5% лекарства, высвобождают достаточное его количество, чтобы вызвать активное подавление процесса развития кровеносных сосудов при размещении на хорионалантоисной мембране. Ингибирование роста кровеносных сосудов приводит к появлению лишенной сосудов зоны, как это показано на фиг. 16С).
Пример 10. Наполненные таксолом полимерные пленки, составленные этиленвинилацетатом и поверхностно-активным соединением
В основном получают пленки двух типов, как указано в Примере 10: пленки из этиленвинилацетата, наполненные таксолом, и смешанные пленки этиленвинилацетат/поверхносно-активное вещество (т.е. Pluronic F127, Span 80 и Pluronic L101), наполненные таксолом.
Исследованные поверхностно-активные вещества представляют собой гидрофобные поверхностно-активные вещества (Span 80 и Pluronic L 101) и одно гидрофильное поверхностно-активное вещество (Pluronic F127). Плюроновые поверхностно-активные вещества сами являются полимерами, что является привлекательным, поскольку их можно смешать с этиленвинилацетатом, чтобы оптимизировать различные свойства по доставке лекарств. Span 80 представляет собой маленькую молекулу, которая тем или иным способом диспергируется в полимерной матрице и не образует смеси.
Поверхностно-активные вещества полезны для модифицирования скорости высвобождения таксола из пленок и оптимизации определенных физических свойств пленок. Одним свойством смешанных пленок, содержащих поверхностно-активное вещество, которое указывает на то, что можно контролировать скорости высвобождения, является их способность изменять скорость и степень набухания соединения в воде. Диффузия воды в матрицу полимер-лекарство критична для высвобождения лекарства из носителя. Фиг.17С и 17D показывают степень набухания пленок, и как при этом изменяется содержание поверхностно-активного вещества в смеси. Пленки из чистого этиленвинилацетата не набухают в сколько-нибудь заметной степени в течение двух месяцев. Однако, увеличивая содержание добавляемого к этиленвинилацетату поверхностно-активного вещества, можно увеличить степень набухания соединения, кроме того, набухание можно увеличить, повышая гидрофильность.
Результаты экспериментов с указанными пленками представлены далее на фиг. 17А-Е. Если коротко, то фиг. 17А показывает высвобождение таксола (в мг) с течением времени из пленок, полученных из чистого этиленвинилацетата. На фиг. 17B указано процентное содержание таксола, остающегося в тех же пленках, как видно из этих двух чертежей, при увеличении нагрузки таксола (т.е. по мере увеличения весового процентного содержания таксола) скорость высвобождения лекарства возрастает, показывая ожидаемую концентрационную зависимость. По мере увеличения нагрузки таксола процент таксола, остающегося в пленке, возрастает, что указывает на то, что большая нагрузка является более предпочтительной для составов, предназначенных для длительного действия.
Физическая прочность и эластичность пленок исследуется на фиг. 17Е. Если коротко, то фиг. 17Е показывает кривые зависимости напряжения от деформации для пленок из чистого этиленвинилацетата и смесей этиленвинилацетат - поверхностно-активное вещество. Эти приближенные измерения напряжений показывают, что эластичность пленок возрастает по мере добавления Pluronic F127, а прочность на разрыв при пластической деформации увеличивается в зависимости от увеличения концентрации по мере добавления Pluronic F127. Эластичность и прочность являются важными параметрами при приготовлении пленки, которую можно использовать в конкретных медицинских целях так, чтобы не наблюдалась деформация материала.
Приведенные выше данные показывают способность определенных поверхностно-активных веществ контролировать скорости высвобождения лекарства и изменять физические свойства носителя.
Пример 11. Включение метоксиполиэтиленгликоля 350 (MePEG) в поли(ε-капролактон) при получения композиции для контролируемой доставки таксола из пасты
Реагенты и оснастка, которую используют в этих экспериментах, включает метоксиполиэтиленгликоль 350 (MePEG), получаемый из компании "Union Carbide" (Дэнбери, штат Коннектикут). Метоксиполиэтиленгликоль 350 представляет собой жидкость при комнатной температуре и затвердевает при температуре от 10oС до минус 5oС.
А. Получение таксолсодержащей пасты на основе MePEG/PCL
Пасту на основе MePEG /PCL получают, растворяя некоторое количество таксола в MePEG, а затем поликапролактон. Одно из преимуществ этого способа заключается в том, что не требуется применение дихлорметана.
В. Изучение температуры плавления
Температура плавления полимерных смесей PCL/MePEG может быть определена методом дифференциальной сканирующей калориметрии в интервале температур от 30oС до 70oС со скоростью нагревания 2,5oС в минуту. Результаты этого эксперимента представлены на фиг. 18А и 18В. Если коротко, то как показано на фиг.18A, температура плавления полимерной смеси (по данным термического анализа) уменьшается по мере увеличения содержания MePEG. Зависимость температуры плавления полимерных смесей от концентрации MePEG приведена на фиг. 18A. Эти низкие величины температуры плавления приводят в итоге к увеличению времени, необходимого для затвердевания расплавов полимерных смесей, как это показано на фиг. 18В. Для затвердевания расплава смеси 30:70 MePEG /PCL требуется вдвое больше времени, чем для самого поликапролактона.
С. Измерение хрупкости
Введение MePEG в поликапролактон, видимо, приводит к получению менее хрупкого твердого вещества, по сравнению с самим поликапролактоном. В качестве "грубого" метода оценки взвешенную иглу бросают с равной высоты в смеси полимеров, содержащих от 0% до 30% MePEG в поликапролактоне, и измеряют расстояние, на которое игла проникает в твердое вещество. Полученный график приведен на фиг. 18С. Приведенные значения являются средними из четырех измерений с точностью + /-1 S.D. Для сравнения испытывают также образец парафина, в который игла проникает на длину 7,25 мм +/-0,3 мм.
D. Изучение высвобождения таксола
Таблетки полимера (поликапролактона, содержащего 0%, 5%, 10% или 20% MePEG) выдерживают в инкубаторе в забуференном фосфатом солевом физиологическом растворе (рН 7,4) при температуре 37oС и с течением времени замеряют процент изменения веса полимера, Как видно из фиг. 18D, весовые потери возрастают с увеличением первоначального содержания MePEG в смеси полимеров. Вероятно, отмечаемые весовые потери вызваны высвобождением MePEG из полимерной матрицы в жидкость при инкубации. Это означает, что таксол должен легко высвобождаться из смесей MePEG/PCL, так как таксол до включения в поликапролактон вначале растворяют в MePEG.
Е. Влияние различных количеств MePEG на высвобождение таксола
Готовят термопасту, включающую от 0,8% до 20% MePEG в поликапролактоне. Ее наполняют 1% таксола. Высвобождение таксола с течением времени из таблеток весом 10 мг в забуференном фосфатом солевом физиологическом растворе при температуре 37oС изучают методом жидкостной хроматографии высокого разрешения. Как показано на фиг. 18Е, количество MePEG в композиции не оказывает влияния на количество высвобождаемого таксола.
F. Влияние различного содержания таксола на общее количество таксола, выделяемого из смеси 20% MePEG/PCL
Готовят термопасту, содержащую 20% MePEG в поликапролактоне, наполненную от 0,2% до J0% таксола. Высвобождение таксола с течением времени определяют, как указано ранее. Как показано на фиг. 18F, количество таксола, высвобождаемого с течением времени, возрастает по мере нагрузки таксола. Если же построить график зависимости в процентах от общего количества высвободившегося таксола, то порядок становится обратным (фиг. 18G), Таким образом, можно получить информацию об остаточном таксоле в пасте и, если можно допустить, что полученные результаты позволяют провести экстраполяцию, то можно оценить период времени, за который таксол высвободится из термопасты, содержащей 20% MePEG.
G. Анализ различных смесей MePEG/PGL на прочность
Для определения прочности "таблеток" твердого полимера с диаметром 0,88 см и средней толщиной 0,560 см используют машину для проведения нагрузочных испытаний СТ-40. Полимерные таблетки представляют собой смеси MePEG с концентрацией 0%, 5%, 10% или 20% в поликапролактоне.
Результаты этих испытаний приведены на фиг. 18Н, где приведена зависимость предела прочности при пластической деформации и время разрушения от процентного содержания MePEG в смеси. Единственная переменная ANOVA показывает, что толщины таблеток в каждой группе одинаковы, как видно из фиг. 18Н, добавление MePEG к поликапролактону уменьшает твердость полученного вещества.
Пример 12. Влияние содержащей таксол термопасты на развитие кровеносных сосудов in vivo
Оплодотворенные эмбрионы цыплят перед получением безоболочечной культуры выдерживают в инкубаторе в течение 4 дней, как описано в Примере 2. Содержимое яиц высвобождают из оболочки, выливают в круглодонную стерильную стеклянную чашку и покрывают крышкой от чашки Петри.
Таксол вводят в термопасту в количестве 5%, 10% и 20% (вес/об), как указано ранее (см. Пример 10) и используют в следующих экспериментах. Высушенную нарезанную термопасту затем нагревают до температуры 60oС и сдавливают между двумя листами парпленки, делая ее плоской, и дают остыть. 6 эмбрионов получают термопасту, содержащую 20% таксола, а 6 эмбрионов получают термопасту, полученную аналогично, но не содержащую таксол. По одному эмбриону умирает в каждой группе, т.е. в контрольной и подвергнутой обработке группе остается по пять эмбрионов.
Кроме того, на 6-й день выдерживания в инкубаторе ненагруженную термопасту и термопасту, содержащую 20% таксола, нагревают до 60oС и помещают непосредственно на растущий край хорионалантоисной мембраны; такой обработке подвергают два эмбриона.
Не наблюдается отличий, полученных в этих двух различных способах нанесения, что указывает на то, что температура пасты в момент ее использования не является определяющим фактором.
Термопастой, содержащей 10% таксола, обрабатывают 11 хорионалантоисных мембран, а еще 11 хорионалантоисных мембран обрабатывают ненагруженной термопастой, в то время как термопастой, содержащей 5% таксола, обрабатывают 10 хорионалантоисных мембран, а еще 10 контрольных хорионалантоисных мембран обрабатывают ненагруженной термопастой. Через два дня (на 8 день инкубации) изучают сосудистую систему с помощью стереомикроскопа. Для усиления контраста деталей сосудов водят липозин II в виде непрозрачного белого раствора.
В эмбрионах, обработанных 5%-ной наполненной таксолом пастой, лишь у двух животных наблюдается максимальное ингибирование процессе развития кровеносных сосудов, в то время как у оставшихся восьми животных отмечается лишь пограничное влияние. У животных, обработанных 10%-ной наполненной таксолом термопастой, лишь у двух животных наблюдается максимальное ингибирование процесса развития кровеносных сосудов, в то время как у оставшихся девяти отмечается лишь пограничное влияние.
20%-ная наполненная таксолом термопаста вызывает появление обширных лишенных капилляров областей (см. фиг. 19В) у всех пяти хорионалантоисных мембран, которые подвергают указанному воздействию. Наибольшая степень ингибирования определяется как лишенная капилляров область с размерами 6Х6 мм. Все хорионалантоисные мембраны, подвергнутые обработке 20%-ной наполненной таксолом термопастой, показывают именно эту степень ингибирования процесса развития кровеносных сосудов. Для сравнения, контрольная (не нагруженная) термопаста не подавляет процесс развития кровеносных сосудов на хорионалантоисной мембране (см. фиг. 19А); эта картина при большем увеличении (отметим, что край пасты виден вверху образца) показывает, что сосуды, примыкающие к пасте, не подвергаются воздействию термопасты. Это указывает на то, что наблюдаемый эффект вызван замедленным высвобождением таксола, а не благодаря выделенному количеству и самому полимеру или вторичному воздействию пасты на развивающуюся сосудистую систему.
Проведенные исследования показывают, что термопаста высвобождает достаточное количество вещества, подавляющего развитие кровеносных сосудов (в данном случае таксол), для ингибирования нормального развития кровеносной сосудистой системы хорионалантоисной мембраны.
Пример 13. Воздействие содержащей таксол термопасты на рост опухоли и на развитие опухоли in vivo.
Оплодотворенные эмбрионы цыплят перед получением безоболочечной культуры выдерживают в инкубаторе в течение 3 дней. Содержимое яиц высвобождают, удаляя оболочку, расположенную вокруг воздушного пространства, отделяя мембрану внутренней оболочки и протыкая противоположный конец оболочки, и позволяют содержимому яйца осторожно вылиться из тупого конца. Содержимое яйца выливают в круглодонную стерильную стеклянную чашку, покрывают крышкой от чашки Петри и помещают в инкубатор с относительной влажностью 90% и с содержанием диоксида углерода 3% (см. Пример 2).
Мышам вводят клетки MDAY-D2 (муриновая лимфоидная опухоль) и дают им вырасти в опухоли весом 0,5-1,0 г. Мышей умерщвляют, место расположения опухоли протирают спиртом, вырезают, помещают в стерильную среду для выращивания культуры и в ламинарном потоке нарезают кубиками размером 1 мм. Перед размещением отсеченных опухолей в девятидневные эмбрионы поверхность хорионалантоисной мембраны осторожно накалывают иглой номер 30 для облегчения имплантации опухоли. Через 8 дней инкубации (4 дня после удаления оболочки) на хорионалантоисные мембраны помещают опухоли и дают им вырасти на хорионалантоисных мембранах в течение четырех дней, чтобы установилось кровоснабжение. Указанным методом получают четыре эмбриона, при этом на каждом эмбрионе размещают 3 опухоли. Из этих эмбрионов одну опухоль обрабатывают термопастой, содержащей 20% таксола, вторую опухоль - ненаполненной термопастой, а третья опухоль не подвергается обработке. Обработку продолжают в течение двух дней и оценивают полученные результаты.
Эксплантаты опухолей MDAY-D2 секретируют факторы
стимулирующие развитие кровеносных сосудов, которые инициируют врастание капилляров (из хорионалантоисной мембраны) в тело опухоли, позволяя ей расти дальше. Поскольку все сосуды опухоли образуются из хорионалантоисной мембраны, а все клетки опухоли образуются из эксплантата, то становится возможным исследовать эффект от терапевтических воздействий на два указанных процесса независимо. Этот анализ используют для определения эффективности наполненной таксолом термопасты на (а) ингибирование развития сосудистой системы опухоли и (b) ингибирование роста самих клеток опухоли. Прямая стереомикроскопическая оценка in vivo и гистологическое изучение фиксированных тканей в этом исследовании показывают следующее. В опухолях, обработанных термопастой, содержащей 20% таксола, наблюдается уменьшение количества кровеносных сосудов, которые снабжают опухоль (см. фиг. 20С и 20D), уменьшение количества кровеносных сосудов внутри опухоли и уменьшение количества кровеносных сосудов по периферии опухоли (области, которая, как правило, наиболее насыщена сосудами в твердых опухолях), по сравнению с контрольными опухолями. Размеры и масса опухолей начинают уменьшаться в течение двух дней проведения исследований. Кроме того, видно, что множество клеток эндотелия захватываются при делении клеток, указывая на то, что влияние оказывается и на разрастание клеток эндотеля. Часто отмечается захват клеток при митотическом делении. 4 эмбриона показывают устойчивою картину:термопаста, содержащая 20% таксола, подавляет сосудистою систему опухоли, в то время как термопаста не оказывает никакого эффекта.
Для сравнения, в хорионалантоисных мембранах, обработанных термопастами, не содержащими таксол, опухоли имеют хорошо развитую сеть сосудов, при этом количество и плотность сосудов возрастает, по сравнению с обычными окружающими тканями, и наблюдается значительно больше кровеносных сосудов, чем в опухолях, обработанных пастой, наполненной таксолом. Вновь образовавшиеся сосуды проникают в опухоль со всех углов и напоминают спицы, присоединенные к середине колеса (см. фиг. 20А. и 20В). В процессе исследования размер и масса опухолей продолжали возрастать. При гистологическом изучении по периферии опухоли наблюдается множество расширенных тонкостенных капилляров и при клеточном делении наблюдается немного эндотелия. Ткани опухоли имеют хорошо развитую сосудистую сеть и распространяются повсюду.
В качестве примера в двух опухолях одинакового размера (первоначально на момент эксплантации), размещенных на одной и той же хорионалантоисной мембране, получают следующие результаты. Для опухоли, обработанной термопастой, наполненной 20% таксола, величина опухоли составляет 330 мм Х 597 мм; непосредственная периферия опухоли имеет 14 кровеносных сосудов, в то время как в теле опухоли имеется лишь 3-4 небольших капилляра. Для опухоли, обработанной ненаполненной термопастой, величина опухоли составляет 623 мм Х 678 мм; непосредственная периферия опухоли имеет 54 кровеносных сосуда, в то время как в теле опухоли имеется 12-14 небольших капилляров. Кроме того, сама окружающая хорионалантоисная мембрана содержит намного больше кровеносных сосудов, по сравнению с областью, окружающей опухоль, обработанную таксолом. Эти исследования показывают, что термопаста высвобождает достаточные количества ингибитора развития кровеносных сосудов (в данном случае - таксола), чтобы подавить патологическое развитие кровеносных сосудов, которое сопровождает рост и развитие опухоли. В этих условиях процесс развития кровеносных сосудов максимально стимулируется клетками опухоли, которые продуцируют факторы, способствующие развитию кровеносных сосудов, и которые способны индуцировать врастание капилляров из окружающих тканей в тело опухоли. Термопаста, содержащая 20% таксола, способна блокировать этот процесс и ограничить способность тканей опухоли поддерживать адекватное кровоснабжение. Это приводит к уменьшению массы опухоли как за счет цитотоксического воздействия лекарства на сами клетки опухоли, так и за счет уменьшения снабжения ткани питательными веществами, необходимыми для роста и распространения опухоли.
Пример 14. Влияние термопасты, наполненной ингибитором развития кровеносных сосудов, на in vivo рост опухоли в муриновой опухолевой модели
Муриновая модель опухоли MDAY-D2 может быть использована для исследования влияния локального медленного высвобождения химиотерапевтических и подавляющих развитие кровеносных сосудов соединений, таких как таксол, на рост опухоли, метастазы опухоли и степень выживания животных. Клеточная линия MDAY-D2 выращивается в суспензии клеток, содержащей 5% сыворотки плода коровы в альфа-среде. Клетки выдерживают инкубаторе при температуре 37oС во влажной атмосфере, содержащей 5% диоксида углерода и разбавляют в 15 раз через каждые 3 дня до тех пор не получится достаточное количество клеток. После периода инкубации жизнеспособные клетки изучают с помощью оптического микроскопа, а затем центрифугируют с ускорением 1500 об/мин в течение 5 минут. Добавляют забуференный фосфатом солевой физиологический раствор, чтобы получить разбавление 1000000 клеток на миллилитр.
Женские особи мышей DBA/2] акклиматизируются после поступления в течение 3-4 дней. Каждой мыши вводят подкожно в заднебоковую часть в виде инъекции 100000 клеток MDAY-D2 в 100 мл забуференного фосфатом физиологического солевого раствора. Предыдущие исследования показывают, что указанная процедура приводит к развитию через 3-4 дня в месте инъекции наблюдаемой визуально опухоли, достигающей через 14 дней веса 1,0-1,7 г, которая дает наблюдаемые визуально метастазы в печени в течение 19-25 дней после инъекции. В зависимости от цели изучения, терапевтическое вмешательство можно осуществить на любой стадии развития болезни.
Используя указанную выше животную модель, 20 мышам подкожно вводят инъекции 140000 клеток MDAY-D2 и дают опухолям вырасти. На 5-й день мышей разделяют на группы по пять мышей в каждой. Место опухоли вскрывают хирургически под наркозом и локально обрабатывают термопастой, наполненной лекарством, или контрольной термопастой, не затрагивая окружающие опухоль ткани, и рану закрывают. Группы из пяти мышей либо не подвергают обработке (рану просто зарывают), вводят лишь полимер (поликапролактон), либо термопасту, содержащую 10% таксола, или термопасту, содержащую 20% таксола (инъекции вводят лишь 4 животным), имплантируют рядом с местом, где находится опухоль. На 16 день мышей умерщвляют, опухоли извлекают и исследуют (поверхностно и гистологически) на предмет роста опухоли, метастазов опухоли, местной и общей токсичности вследствие обработки, воздействия на заживление раны, воздействия на развитие кровеносных сосудов опухоли и состояния пасты, оставшейся в месте иссечения.
Вес опухолей для каждого животного приведен в таблице III (см. в конце описания).
Термопаста, наполненная 20% таксола, уменьшает рост опухоли более чем на 85% (средний вес 0,105), по сравнению с контрольными животными (средний вес 0,681). У животных, подвергавшихся обработке только термопастой или термопастой, содержащей 10% таксола, наблюдается лишь умеренное воздействие на рост опухоли; вес опухоли уменьшился лишь на 10% и 35%, соответственно (фиг. 21А). Таким образом, термопаста, содержащая 20% таксола, оказывается более эффективной для подавления роста опухоли, чем термопаста, содержащая 10% таксола (см. фиг. 21С; см. также фиг. 21В).
Термопасту обнаруживают у некоторых животных в месте ее нанесения. Полимер в количестве от 0,026 г до 0,078 г обнаруживают у 8 из 15 мышей. У каждого животного из группы, подвергавшейся обработке термопастой с 20% таксола, остается некоторое количество полимера, свидетельствуя о том, что он менее подвержен растворению. Гистологически у опухолей, обработанных термопастой, содержащей таксол, наблюдается меньший некроз клеток и тканей, чем у контрольных опухолей. Сосудистая система сокращается и часто наблюдаются клетки эндотелия, захваченные при клеточном делении. Наполненная таксолом термопаста не оказывает ощутимого воздействия на целостность или насыщенность клетками кожи или тканей, окружающих опухоль. На первый взгляд процесс заживление ран не нарушен.
Из вышесказанного очевидно, что специфические варианты осуществления настоящего изобретения приведены здесь для иллюстрации и могут быть предложены различные их модификации, не противоречащие сущности настоящего изобретения и не выходящие за границы притязаний по настоящему изобретению. Таким образом, изобретение ограничивается лишь приведенной далее формулой изобретения.

Claims (21)

1. Стент для расширения просвета расположенного внутри тела канала, включающий в общем случае трубчатую структуру, покрытую композицией, содержащей таксол, или его аналог, или его производное и фармацевтически приемлемый полимер.
2. Стент по п. 1, в котором указанный полимер включает поликапролактон.
3. Стент по п. 1, в котором указанный полимер включает полимолочную кислоту.
4. Стент по п. 1, где указанный полимер включает полиэтиленвинилацетат.
5. Стент по п. 1, где указанный полимер включает сополимер поликапролактона и полимолочной кислоты.
6. Стент по п. 1, где указанный полимер включает желатин.
7. Стент по любому из пп. 1-6, где указанный таксол, или его аналог, или его производное является таксотером.
8. Стент по любому из пп. 1-6, отличающийся тем, что является сосудистым стентом.
9. Стент по любому из пп. 1-6, отличающийся тем, что является стентом для желчных протоков.
10. Стент по любому из пп. 1-6, отличающийся тем, что является уретральным стентом.
11. Стент по любому из пп. 1-6, отличающийся тем, что является стентом для пищевода.
12. Стент по любому из пп. 1-6, отличающийся тем, что является трахеально-бронхиальным стентом.
13. Стент по любому из пп. 1-6 для лечения сужения каналов внутри тела пациента.
14. Стент по п. 13 для лечения или профилактики рецидивирующего стеноза.
15. Стент по п. 1, отличающийся тем, что покрытие на указанный стент нанесено распылением.
16. Стент по п. 1, отличающийся тем, что покрытие на указанный стент нанесено погружением.
17. Стент по п. 1, отличающийся тем, что покрытие на указанный стент нанесено вплетением нити.
18. Стент по п. 1, отличающийся тем, что он сам изготовлен из материала, включающего композицию покрытия.
19. Стент по п. 1, дополнительно включающий гидрогель.
20. Стент по п. 19, отличающийся тем, что покрыт таксолом, или его аналогом, или его производным путем абсорбции.
21. Стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала, включающий в общем случае трубчатую структуру и муфту или сетку, в котором указанная муфта или сетка покрыта композицией, включающей таксол, или его аналог, или его производное и фармацевтически приемлемый полимер.
RU96105391/14A 1993-07-19 1994-07-19 Стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала RU2180844C2 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US9453693A 1993-07-19 1993-07-19
US08/094,536 1993-07-19

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2001132111/15A Division RU2304433C2 (ru) 1993-07-19 2001-11-28 Композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, и способы их использования

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU96105391A RU96105391A (ru) 1998-05-20
RU2180844C2 true RU2180844C2 (ru) 2002-03-27

Family

ID=22245764

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96105391/14A RU2180844C2 (ru) 1993-07-19 1994-07-19 Стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала
RU2001132111/15A RU2304433C2 (ru) 1993-07-19 2001-11-28 Композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, и способы их использования
RU2007111679/15A RU2007111679A (ru) 1993-07-19 2007-03-29 Композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, и способы их использования

Family Applications After (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2001132111/15A RU2304433C2 (ru) 1993-07-19 2001-11-28 Композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, и способы их использования
RU2007111679/15A RU2007111679A (ru) 1993-07-19 2007-03-29 Композиции, подавляющие развитие кровеносных сосудов, и способы их использования

Country Status (19)

Country Link
US (23) US6506411B2 (ru)
EP (13) EP1695698B1 (ru)
JP (4) JP3423317B2 (ru)
KR (5) KR100389223B1 (ru)
CN (7) CN101007173A (ru)
AT (10) ATE502625T1 (ru)
AU (1) AU693797B2 (ru)
CA (4) CA2167268C (ru)
DE (10) DE69435342D1 (ru)
DK (5) DK1155689T3 (ru)
ES (5) ES2449311T3 (ru)
GR (1) GR3024833T3 (ru)
HK (2) HK1042054B (ru)
LU (2) LU92423I2 (ru)
NO (2) NO324275B1 (ru)
NZ (5) NZ533467A (ru)
PT (4) PT1159974E (ru)
RU (3) RU2180844C2 (ru)
WO (1) WO1995003036A1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2467705C1 (ru) * 2011-06-30 2012-11-27 ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ "РОССИЙСКИЙ НАУЧНЫЙ ЦЕНТР РАДИОЛОГИИ И ХИРУРГИЧЕСКИХ ТЕХНОЛОГИЙ" МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СОЦИАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ (ФГУ "РНЦРХТ" Минздравсоцразвития России) Способ лечения облитерирующего атеросклероза сосудов нижних конечностей
RU2555378C1 (ru) * 2014-07-10 2015-07-10 Вадим Викторович Евдокимов Способ эндоскопической остановки и профилактики язвенных кровотечений из дефектов стенки 12-перстной кишки

Families Citing this family (438)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5853746A (en) * 1991-01-31 1998-12-29 Robert Francis Shaw Methods and compositions for the treatment and repair of defects or lesions in cartilage or bone using functional barrier
US6515009B1 (en) 1991-09-27 2003-02-04 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US5811447A (en) 1993-01-28 1998-09-22 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US5981568A (en) 1993-01-28 1999-11-09 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US20030203976A1 (en) * 1993-07-19 2003-10-30 William L. Hunter Anti-angiogenic compositions and methods of use
US5994341A (en) * 1993-07-19 1999-11-30 Angiogenesis Technologies, Inc. Anti-angiogenic Compositions and methods for the treatment of arthritis
NZ533467A (en) * 1993-07-19 2006-02-24 Angiotech Pharm Inc Anti-angiogenic compositions and methods of use
WO1995003795A1 (en) 1993-07-29 1995-02-09 The Government Of The United States Of America, Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Method of treating atherosclerosis or restenosis using microtubule stabilizing agent
US6025334A (en) * 1994-04-28 2000-02-15 Les Laboratoires Aeterna Inc. Extracts of shark cartilage having anti-collagenolytic, anti-inflammatory, anti-angiogenic and anti-tumoral activities; process of making, methods of using and compositions thereof
US5618925A (en) * 1994-04-28 1997-04-08 Les Laboratories Aeterna Inc. Extracts of shark cartilage having an anti-angiogenic activity and an effect on tumor regression; process of making thereof
US6028118A (en) * 1996-08-08 2000-02-22 Les Laboratoires Aeterna Inc. Methods of using extracts of shark cartilage
US6380366B1 (en) 1994-04-28 2002-04-30 Les Laboratoires Aeterna Inc. Shark cartilage extract:process of making, methods of using and compositions thereof
US6558798B2 (en) 1995-02-22 2003-05-06 Scimed Life Systems, Inc. Hydrophilic coating and substrates coated therewith having enhanced durability and lubricity
US5605696A (en) * 1995-03-30 1997-02-25 Advanced Cardiovascular Systems, Inc. Drug loaded polymeric material and method of manufacture
US20070203520A1 (en) * 1995-06-07 2007-08-30 Dennis Griffin Endovascular filter
US7550005B2 (en) * 1995-06-07 2009-06-23 Cook Incorporated Coated implantable medical device
US7611533B2 (en) 1995-06-07 2009-11-03 Cook Incorporated Coated implantable medical device
US7867275B2 (en) * 1995-06-07 2011-01-11 Cook Incorporated Coated implantable medical device method
US7846202B2 (en) * 1995-06-07 2010-12-07 Cook Incorporated Coated implantable medical device
US6774278B1 (en) 1995-06-07 2004-08-10 Cook Incorporated Coated implantable medical device
US7896914B2 (en) * 1995-06-07 2011-03-01 Cook Incorporated Coated implantable medical device
HUP9700322A3 (en) 1995-06-09 2001-03-28 Euro Celtique Sa Formulations and methods for providing prolonged local anesthesia
SI0932399T1 (sl) * 1996-03-12 2006-10-31 Pg Txl Co Lp Vodotopna paklitakselna predzdravila
US6441025B2 (en) 1996-03-12 2002-08-27 Pg-Txl Company, L.P. Water soluble paclitaxel derivatives
NZ505584A (en) * 1996-05-24 2002-04-26 Univ British Columbia Delivery of a therapeutic agent to the smooth muscle cells of a body passageway via an adventia
AU775787B2 (en) * 1996-05-24 2004-08-12 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for treating or preventing diseases of body passageways
US6143037A (en) * 1996-06-12 2000-11-07 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for coating medical devices
WO1997049391A1 (en) 1996-06-24 1997-12-31 Euro-Celtique, S.A. Methods for providing safe local anesthesia
US7351421B2 (en) * 1996-11-05 2008-04-01 Hsing-Wen Sung Drug-eluting stent having collagen drug carrier chemically treated with genipin
US6515016B2 (en) 1996-12-02 2003-02-04 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Composition and methods of paclitaxel for treating psoriasis
US6495579B1 (en) 1996-12-02 2002-12-17 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Method for treating multiple sclerosis
US6204388B1 (en) * 1996-12-03 2001-03-20 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Synthesis of epothilones, intermediates thereto and analogues thereof
US6867305B2 (en) * 1996-12-03 2005-03-15 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Synthesis of epothilones, intermediates thereto and analogues thereof
DE69734362T2 (de) * 1996-12-03 2006-07-20 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Synthese von epothilonen, zwischenprodukte dazu, analoga und verwendungen davon
US20050043376A1 (en) * 1996-12-03 2005-02-24 Danishefsky Samuel J. Synthesis of epothilones, intermediates thereto, analogues and uses thereof
WO1998040088A1 (en) 1997-03-11 1998-09-17 Les Laboratoires Aeterna Inc. Compositions for treating tumors containing shark cartilage extracts and anti-neoplastic agents
US6511477B2 (en) 1997-03-13 2003-01-28 Biocardia, Inc. Method of drug delivery to interstitial regions of the myocardium
US6273913B1 (en) * 1997-04-18 2001-08-14 Cordis Corporation Modified stent useful for delivery of drugs along stent strut
US20030199425A1 (en) * 1997-06-27 2003-10-23 Desai Neil P. Compositions and methods for treatment of hyperplasia
US8853260B2 (en) 1997-06-27 2014-10-07 Abraxis Bioscience, Llc Formulations of pharmacological agents, methods for the preparation thereof and methods for the use thereof
US6306166B1 (en) 1997-08-13 2001-10-23 Scimed Life Systems, Inc. Loading and release of water-insoluble drugs
WO1999008729A1 (en) * 1997-08-13 1999-02-25 Boston Scientific Limited Loading and release of water-insoluble drugs
DE69841984D1 (de) * 1997-09-05 2010-12-16 Maruho K K Zusammensetzung aus nanokapseln zur behandlung von intraarticulaeren erkrankungen
DE19744135C1 (de) * 1997-09-29 1999-03-25 Schering Ag Beschichtete medizinische Implantate, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung zur Restenoseprophylaxe
US6485514B1 (en) * 1997-12-12 2002-11-26 Supergen, Inc. Local delivery of therapeutic agents
CA2318446C (en) * 1998-03-04 2008-09-23 Takeda Chemical Industries, Ltd. Sustained-release preparation for aii antagonist, production and use thereof
US6241762B1 (en) * 1998-03-30 2001-06-05 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device with ductile hinges
US7208010B2 (en) 2000-10-16 2007-04-24 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device for delivery of beneficial agent
US7208011B2 (en) * 2001-08-20 2007-04-24 Conor Medsystems, Inc. Implantable medical device with drug filled holes
US20040254635A1 (en) 1998-03-30 2004-12-16 Shanley John F. Expandable medical device for delivery of beneficial agent
ATE219693T1 (de) * 1998-04-27 2002-07-15 Surmodics Inc Bioaktive wirkstoffe freisetzende beschichtungen
US6168807B1 (en) 1998-07-23 2001-01-02 Les Laboratoires Aeterna Inc. Low molecular weight components of shark cartilage, processes for their preparation and therapeutic uses thereof
AU771367B2 (en) * 1998-08-20 2004-03-18 Cook Medical Technologies Llc Coated implantable medical device
WO2000010552A2 (en) * 1998-08-24 2000-03-02 Global Vascular Concepts, Inc. Use of anti-angiogenic agents for inhibiting vessel wall injury
US6293967B1 (en) 1998-10-29 2001-09-25 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device with ductile hinges
AU1821200A (en) * 1998-12-03 2000-06-19 Scimed Life Systems, Inc. Stent having drug crystals thereon
US6120847A (en) * 1999-01-08 2000-09-19 Scimed Life Systems, Inc. Surface treatment method for stent coating
US6419692B1 (en) 1999-02-03 2002-07-16 Scimed Life Systems, Inc. Surface protection method for stents and balloon catheters for drug delivery
ATE297198T1 (de) * 1999-02-23 2005-06-15 Angiotech Int Ag Zusammensetzungen und verfahren zur verbesserung der integrität von angegriffenen körperpassagewegen und höhlen
US20020058286A1 (en) * 1999-02-24 2002-05-16 Danishefsky Samuel J. Synthesis of epothilones, intermediates thereto and analogues thereof
AU3759100A (en) * 1999-03-24 2000-10-09 B.F. Goodrich Company, The Inhibition of matrix metalloproteinases with polymers and pharmaceutical applications thereof
US6156373A (en) * 1999-05-03 2000-12-05 Scimed Life Systems, Inc. Medical device coating methods and devices
US6290673B1 (en) * 1999-05-20 2001-09-18 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device delivery system and method
US20040110722A1 (en) * 1999-05-27 2004-06-10 Ornberg Richard L. Modified hyaluronic acid polymers
ES2240101T3 (es) 1999-05-27 2005-10-16 Monsanto Company Biomateriales modificados con mimeticos de superoxido dismutasa.
US6258121B1 (en) * 1999-07-02 2001-07-10 Scimed Life Systems, Inc. Stent coating
DE29911689U1 (de) * 1999-07-06 2000-04-06 Sterk, Peter, Dr., 88212 Ravensburg Mittel für den Gefässverschluß von organischem Gewebe
US7687462B2 (en) 1999-10-05 2010-03-30 The Regents Of The University Of California Composition for promoting cartilage formation or repair comprising a nell gene product and method of treating cartilage-related conditions using such composition
EP1235598A2 (en) * 1999-11-12 2002-09-04 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Compositions of a combination of radioactive therapy and cell-cycle inhibitors
AU2609401A (en) * 1999-12-29 2001-07-09 Nicholas Kipshidze Apparatus and method for delivering compounds to a living organism
WO2001064214A2 (en) * 2000-02-28 2001-09-07 The University Of British Columbia Compositions and methods for the treatment of inflammatory diseases using topoisomerase inhibitors
WO2001066016A1 (en) * 2000-03-06 2001-09-13 Scimed Life Systems, Inc. Embolic agents visible under ultrasound
US20020077290A1 (en) 2000-03-17 2002-06-20 Rama Bhatt Polyglutamic acid-camptothecin conjugates and methods of preparation
US20030099683A1 (en) * 2000-03-18 2003-05-29 Michael Grunze Polyphosphazene derivatives
US20030212022A1 (en) * 2001-03-23 2003-11-13 Jean-Marie Vogel Compositions and methods for gene therapy
ES2551164T3 (es) * 2000-03-24 2015-11-16 Biosphere Medical, Inc. Microesferas para embolización activa
WO2001072280A2 (en) * 2000-03-24 2001-10-04 Biosphere Medical Inc. Microspheres for gene therapy
JP2004500918A (ja) 2000-04-11 2004-01-15 ポリゼニックス　ゲーエムベーハー ポリ−トリ−フルオロ−エトキシポリホスファゼンカバーリングおよびフィルム
US20090004240A1 (en) * 2000-08-11 2009-01-01 Celonova Biosciences, Inc. Implants with a phosphazene-containing coating
EP1179353A1 (de) * 2000-08-11 2002-02-13 B. Braun Melsungen Ag Antithrombogene Implantate mit Beschichtung aus Polyphosphazenen und einem pharmakologisch aktiven Wirkstoff
ATE547080T1 (de) 2000-08-30 2012-03-15 Univ Johns Hopkins Vorrichtungen zur intraokularen arzneimittelabgabe
US7402173B2 (en) * 2000-09-18 2008-07-22 Boston Scientific Scimed, Inc. Metal stent with surface layer of noble metal oxide and method of fabrication
US7101391B2 (en) * 2000-09-18 2006-09-05 Inflow Dynamics Inc. Primarily niobium stent
ATE343969T1 (de) † 2000-09-29 2006-11-15 Cordis Corp Beschichtete medizinische geräte
US6764507B2 (en) 2000-10-16 2004-07-20 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device with improved spatial distribution
EP1498084B1 (en) 2000-10-16 2014-06-18 Innovational Holdings, LLC Expandable medical device for delivery of beneficial agent
US7803149B2 (en) * 2002-07-12 2010-09-28 Cook Incorporated Coated medical device
WO2002068000A2 (en) * 2000-11-16 2002-09-06 Microspherix Llc Polymeric imagable brachytherapy seed
US7776310B2 (en) 2000-11-16 2010-08-17 Microspherix Llc Flexible and/or elastic brachytherapy seed or strand
US6746661B2 (en) * 2000-11-16 2004-06-08 Microspherix Llc Brachytherapy seed
US7425217B2 (en) 2000-11-16 2008-09-16 Maier Nathan C System and method for inhibiting cellular proliferation with tachykinins
AU2002218995A1 (en) 2000-11-21 2002-06-03 Schering A.G. Tubular vascular implants (stents) and methods for producing the same
US9080146B2 (en) 2001-01-11 2015-07-14 Celonova Biosciences, Inc. Substrates containing polyphosphazene as matrices and substrates containing polyphosphazene with a micro-structured surface
GB0100761D0 (en) * 2001-01-11 2001-02-21 Biocompatibles Ltd Drug delivery from stents
DE10100961B4 (de) * 2001-01-11 2005-08-04 Polyzenix Gmbh Körperverträglicher Werkstoff und mit diesem Werkstoff beschichtetes Substrat für die Züchtung von Zellen und künstlichen aus Zellen aufgebauten oder gewachsenen organischen Implantaten
GB0100760D0 (en) 2001-01-11 2001-02-21 Biocompatibles Ltd Drug delivery from stents
US20020176893A1 (en) * 2001-02-02 2002-11-28 Wironen John F. Compositions, implants, methods, and kits for closure of lumen openings, repair of ruptured tissue, and for bulking of tissue
US6685626B2 (en) 2001-02-02 2004-02-03 Regeneration Technologies, Inc. Compositions, devices, methods, and kits for induction of adhesions
US20040073294A1 (en) * 2002-09-20 2004-04-15 Conor Medsystems, Inc. Method and apparatus for loading a beneficial agent into an expandable medical device
US20040204756A1 (en) * 2004-02-11 2004-10-14 Diaz Stephen Hunter Absorbent article with improved liquid acquisition capacity
US6964680B2 (en) * 2001-02-05 2005-11-15 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device with tapered hinge
GB0104383D0 (en) 2001-02-22 2001-04-11 Psimedica Ltd Cancer Treatment
EP1418945A2 (en) 2001-03-13 2004-05-19 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Micellar drug delivery vehicles and uses thereof
US7771468B2 (en) 2001-03-16 2010-08-10 Angiotech Biocoatings Corp. Medicated stent having multi-layer polymer coating
DE10115740A1 (de) 2001-03-26 2002-10-02 Ulrich Speck Zubereitung für die Restenoseprophylaxe
US20040185101A1 (en) * 2001-03-27 2004-09-23 Macromed, Incorporated. Biodegradable triblock copolymers as solubilizing agents for drugs and method of use thereof
DE60220519T2 (de) * 2001-04-20 2007-09-27 The University Of British Columbia, Vancouver Mizellares arzneistoffverabreichungssystem für hydrophobe arzneistoffe
US20030157161A1 (en) * 2001-05-01 2003-08-21 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for treating inflammatory conditions utilizing protein or polysaccharide containing anti-microtubule agents
US7651695B2 (en) * 2001-05-18 2010-01-26 Advanced Cardiovascular Systems, Inc. Medicated stents for the treatment of vascular disease
US20030032935A1 (en) * 2001-08-10 2003-02-13 Scimed Life Systems, Inc. Packages facilitating convenient mixing and delivery of liquids
ATE340551T1 (de) * 2001-08-17 2006-10-15 Polyzenix Gmbh Vorrichtung auf basis von nitinol mit polyphosphazenüberzug
US20040249443A1 (en) * 2001-08-20 2004-12-09 Shanley John F. Expandable medical device for treating cardiac arrhythmias
US7056338B2 (en) * 2003-03-28 2006-06-06 Conor Medsystems, Inc. Therapeutic agent delivery device with controlled therapeutic agent release rates
US7842083B2 (en) 2001-08-20 2010-11-30 Innovational Holdings, Llc. Expandable medical device with improved spatial distribution
US20040121981A1 (en) * 2001-11-21 2004-06-24 Glycogenesys, Inc. Method for controlling angiogenesis in animals
US7927368B2 (en) 2002-03-25 2011-04-19 Kieran Murphy Llc Device viewable under an imaging beam
US9375203B2 (en) 2002-03-25 2016-06-28 Kieran Murphy Llc Biopsy needle
US20030181810A1 (en) 2002-03-25 2003-09-25 Murphy Kieran P. Kit for image guided surgical procedures
US7094369B2 (en) * 2002-03-29 2006-08-22 Scimed Life Systems, Inc. Processes for manufacturing polymeric microspheres
US7131997B2 (en) * 2002-03-29 2006-11-07 Scimed Life Systems, Inc. Tissue treatment
US7462366B2 (en) * 2002-03-29 2008-12-09 Boston Scientific Scimed, Inc. Drug delivery particle
US7053134B2 (en) * 2002-04-04 2006-05-30 Scimed Life Systems, Inc. Forming a chemically cross-linked particle of a desired shape and diameter
US20040038303A1 (en) * 2002-04-08 2004-02-26 Unger Gretchen M. Biologic modulations with nanoparticles
CN100553677C (zh) * 2002-04-22 2009-10-28 财团法人乙卯研究所 用于血管性疾病治疗的药物
NZ536308A (en) * 2002-05-24 2009-01-31 Angiotech Int Ag Compositions and methods for coating medical implants
US8313760B2 (en) 2002-05-24 2012-11-20 Angiotech International Ag Compositions and methods for coating medical implants
CZ294371B6 (cs) * 2002-06-10 2004-12-15 Pliva - Lachema, A. S. Stabilizovaná farmaceutická kompozice na bázi polyoxyethylovaného ricinového oleje a způsob její přípravy
US7649023B2 (en) 2002-06-11 2010-01-19 Novartis Ag Biodegradable block copolymeric compositions for drug delivery
AU2003240000A1 (en) 2002-06-12 2003-12-31 Boston Scientific Limited Bulking agents
US20030232087A1 (en) * 2002-06-18 2003-12-18 Lawin Laurie R. Bioactive agent release coating with aromatic poly(meth)acrylates
US7097850B2 (en) * 2002-06-18 2006-08-29 Surmodics, Inc. Bioactive agent release coating and controlled humidity method
CN100346850C (zh) * 2003-05-28 2007-11-07 微创医疗器械(上海)有限公司 一种药物涂层支架
US20080138377A1 (en) * 2002-07-05 2008-06-12 Celonova Biosciences, Inc. Vasodilator Eluting Luminal Stent Devices With A Specific Polyphosphazene Coating and Methods for Their Manufacture and Use
US20080138433A1 (en) * 2002-07-05 2008-06-12 Celonova Biosciences, Inc. Vasodilator eluting blood storage and administration devices with a specific polyphosphazene coating and methods for their manufacture and use
US20050163821A1 (en) * 2002-08-02 2005-07-28 Hsing-Wen Sung Drug-eluting Biodegradable Stent and Delivery Means
US7449236B2 (en) * 2002-08-09 2008-11-11 Boston Scientific Scimed, Inc. Porous polymeric particle comprising polyvinyl alcohol and having interior to surface porosity-gradient
US20040076582A1 (en) * 2002-08-30 2004-04-22 Dimatteo Kristian Agent delivery particle
US7842377B2 (en) 2003-08-08 2010-11-30 Boston Scientific Scimed, Inc. Porous polymeric particle comprising polyvinyl alcohol and having interior to surface porosity-gradient
US7649006B2 (en) 2002-08-23 2010-01-19 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Synthesis of epothilones, intermediates thereto and analogues thereof
ES2281692T3 (es) 2002-08-23 2007-10-01 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Sintesis de epotilones, sus intermediarios, sus analogos y sus usos.
US6921769B2 (en) 2002-08-23 2005-07-26 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Synthesis of epothilones, intermediates thereto and analogues thereof
JP3887588B2 (ja) * 2002-08-30 2007-02-28 株式会社リガク Ｘ線回折による応力測定法
US8012454B2 (en) 2002-08-30 2011-09-06 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolization
ES2428354T3 (es) * 2002-09-18 2013-11-07 Trustees Of The University Of Pennsylvania Rapamicina para usar en la inhibición o prevención de la neovascularización coroidea
US20040127976A1 (en) * 2002-09-20 2004-07-01 Conor Medsystems, Inc. Method and apparatus for loading a beneficial agent into an expandable medical device
DE10244847A1 (de) 2002-09-20 2004-04-01 Ulrich Prof. Dr. Speck Medizinische Vorrichtung zur Arzneimittelabgabe
JP2006500121A (ja) * 2002-09-20 2006-01-05 コナー　メドシステムズ，　インコーポレイテッド 複数の有益な作用物質の送出用の開口を有する拡張式医療器具
MXPA05003183A (es) * 2002-09-26 2005-06-08 Angiotech Int Ag Evolturas perivasculares.
CA2501717C (en) * 2002-10-15 2012-09-18 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College Use of epothilone derivatives for the treatment of hyperparathyroidism
WO2004038752A2 (en) * 2002-10-21 2004-05-06 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Contiguous capillary electrospray sources and analytical device
US7588825B2 (en) * 2002-10-23 2009-09-15 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolic compositions
US7883490B2 (en) 2002-10-23 2011-02-08 Boston Scientific Scimed, Inc. Mixing and delivery of therapeutic compositions
WO2004043511A1 (en) * 2002-11-08 2004-05-27 Conor Medsystems, Inc. Method and apparatus for treating vulnerable artherosclerotic plaque
US20040143321A1 (en) * 2002-11-08 2004-07-22 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device and method for treating chronic total occlusions with local delivery of an angiogenic factor
US20040142014A1 (en) * 2002-11-08 2004-07-22 Conor Medsystems, Inc. Method and apparatus for reducing tissue damage after ischemic injury
US9770349B2 (en) 2002-11-13 2017-09-26 University Of Virginia Patent Foundation Nanoporous stents with enhanced cellular adhesion and reduced neointimal formation
US20060121080A1 (en) 2002-11-13 2006-06-08 Lye Whye K Medical devices having nanoporous layers and methods for making the same
EP1572032B1 (en) 2002-11-13 2008-07-30 Setagon, Inc. Medical devices having porous layers and methods for making same
KR20200083657A (ko) 2002-12-09 2020-07-08 아브락시스 바이오사이언스, 엘엘씨 약리학적 물질의 조성물 및 그 전달방법
US7338557B1 (en) * 2002-12-17 2008-03-04 Advanced Cardiovascular Systems, Inc. Nozzle for use in coating a stent
US7842791B2 (en) 2002-12-19 2010-11-30 Nancy Jean Britten Dispersible pharmaceutical compositions
JP2006525386A (ja) * 2003-03-26 2006-11-09 ポリゼニックス ゲーエムベーハー コーティングされた歯科用移植物
US20040202692A1 (en) * 2003-03-28 2004-10-14 Conor Medsystems, Inc. Implantable medical device and method for in situ selective modulation of agent delivery
US20050002983A1 (en) * 2003-03-28 2005-01-06 Johnson Robert G. Devices, methods, and compositions to prevent restenosis
US20050010170A1 (en) * 2004-02-11 2005-01-13 Shanley John F Implantable medical device with beneficial agent concentration gradient
WO2004087214A1 (en) 2003-03-28 2004-10-14 Conor Medsystems, Inc. Implantable medical device with beneficial agent concentration gradient
US7306580B2 (en) 2003-04-16 2007-12-11 Cook Incorporated Medical device with therapeutic agents
US20040220534A1 (en) * 2003-04-29 2004-11-04 Martens Paul W. Medical device with antimicrobial layer
JP4824549B2 (ja) * 2003-05-02 2011-11-30 サーモディクス，インコーポレイティド 制御放出型の生体活性物質デリバリー・デバイス
US8246974B2 (en) * 2003-05-02 2012-08-21 Surmodics, Inc. Medical devices and methods for producing the same
US7169179B2 (en) * 2003-06-05 2007-01-30 Conor Medsystems, Inc. Drug delivery device and method for bi-directional drug delivery
CA2535345A1 (en) * 2003-08-13 2005-03-03 Medtronic, Inc. Active agent delivery systems including a miscible polymer blend, medical devices, and methods
WO2005018600A2 (en) * 2003-08-22 2005-03-03 Cube Medical A/S Method of treating a patient suffering from a solid tumour
US7976823B2 (en) 2003-08-29 2011-07-12 Boston Scientific Scimed, Inc. Ferromagnetic particles and methods
CA2539324A1 (en) * 2003-09-18 2005-03-31 Macusight, Inc. Transscleral delivery
US7785653B2 (en) 2003-09-22 2010-08-31 Innovational Holdings Llc Method and apparatus for loading a beneficial agent into an expandable medical device
US7056337B2 (en) * 2003-10-21 2006-06-06 Cook Incorporated Natural tissue stent
US7901770B2 (en) 2003-11-04 2011-03-08 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolic compositions
US20050100529A1 (en) * 2003-11-06 2005-05-12 Zeldis Jerome B. Methods of using and compositions comprising immunomodulatory compounds for the treatment and management of asbestos-related diseases and disorders
FR2861993B1 (fr) * 2003-11-06 2006-01-21 Jean Claude Rigaud Complexe moleculaire anti restenose pour endoprothese intracoronaire
JP2007516740A (ja) * 2003-11-10 2007-06-28 アンジオテック インターナショナル アーゲー 医療移植片（ｉｍｐｌａｎｔｓ）および瘢痕化抑制剤
US20050100577A1 (en) * 2003-11-10 2005-05-12 Parker Theodore L. Expandable medical device with beneficial agent matrix formed by a multi solvent system
AU2004293463A1 (en) * 2003-11-20 2005-06-09 Angiotech International Ag Implantable sensors and implantable pumps and anti-scarring agents
US20050208095A1 (en) * 2003-11-20 2005-09-22 Angiotech International Ag Polymer compositions and methods for their use
US20050209664A1 (en) * 2003-11-20 2005-09-22 Angiotech International Ag Electrical devices and anti-scarring agents
CN1897930A (zh) * 2004-01-30 2007-01-17 血管技术国际股份公司 用于治疗挛缩的组合物和方法
US7349971B2 (en) * 2004-02-05 2008-03-25 Scenera Technologies, Llc System for transmitting data utilizing multiple communication applications simultaneously in response to user request without specifying recipient's communication information
US7294145B2 (en) * 2004-02-26 2007-11-13 Boston Scientific Scimed, Inc. Stent with differently coated inside and outside surfaces
US7736671B2 (en) 2004-03-02 2010-06-15 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolization
US8173176B2 (en) 2004-03-30 2012-05-08 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolization
US8003122B2 (en) * 2004-03-31 2011-08-23 Cordis Corporation Device for local and/or regional delivery employing liquid formulations of therapeutic agents
US20060083772A1 (en) * 2004-04-06 2006-04-20 Dewitt David M Coating compositions for bioactive agents
WO2005099786A1 (en) * 2004-04-06 2005-10-27 Surmodics, Inc. Coating compositions for bioactive agents
US20050238870A1 (en) * 2004-04-22 2005-10-27 Marcia Buiser Embolization
ATE367132T1 (de) * 2004-05-25 2007-08-15 Cook William Europ Stent und stentbeseitigungsvorrichtung
US7311861B2 (en) 2004-06-01 2007-12-25 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolization
US20050287287A1 (en) * 2004-06-24 2005-12-29 Parker Theodore L Methods and systems for loading an implantable medical device with beneficial agent
US20080280973A1 (en) * 2004-06-28 2008-11-13 Wender Paul A Laulimalide Analogues as Therapeutic Agents
WO2006017275A1 (en) 2004-07-13 2006-02-16 The University Of Tennessee Research Foundation Adhesive composition for carrying therapeutic agents as delivery vehicle on coatings applied to vascular grafts
US8119153B2 (en) * 2004-08-26 2012-02-21 Boston Scientific Scimed, Inc. Stents with drug eluting coatings
EP1799151A4 (en) * 2004-09-15 2014-09-17 Conor Medsystems Inc BINDERSTAND WITH A CERPRINCIBLE END AND METHOD FOR STORING A STENT IN A BIFURCATION
US8940311B2 (en) 2004-10-21 2015-01-27 Tae-Hong Lim In situ controlled release drug delivery system
US20210299056A9 (en) 2004-10-25 2021-09-30 Varian Medical Systems, Inc. Color-Coded Polymeric Particles of Predetermined Size for Therapeutic and/or Diagnostic Applications and Related Methods
US9114162B2 (en) 2004-10-25 2015-08-25 Celonova Biosciences, Inc. Loadable polymeric particles for enhanced imaging in clinical applications and methods of preparing and using the same
US9107850B2 (en) 2004-10-25 2015-08-18 Celonova Biosciences, Inc. Color-coded and sized loadable polymeric particles for therapeutic and/or diagnostic applications and methods of preparing and using the same
US20060093647A1 (en) * 2004-10-29 2006-05-04 Villafana Manuel A Multiple layer coating composition
EP1809279B1 (en) * 2004-11-08 2013-05-29 Baxter International Inc. Particulate compositions of tubulin inhibitor
US8425550B2 (en) 2004-12-01 2013-04-23 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolic coils
JP2008528204A (ja) * 2005-01-28 2008-07-31 テファ， インコーポレイテッド ポリ−４−ヒドロキシブチレート粒子を使用した塞栓形成
BRPI0606130A2 (pt) * 2005-02-03 2009-06-02 Cinv Ag materiais de administração de fármacos feitos através de tecnologia sol/gel
US9050393B2 (en) 2005-02-08 2015-06-09 Bruce N. Saffran Medical devices and methods for modulation of physiology using device-based surface chemistry
DK1848431T3 (en) * 2005-02-09 2016-04-18 Santen Pharmaceutical Co Ltd LIQUID FORMULATIONS FOR TREATMENT OF DISEASES OR CONDITIONS
US8663639B2 (en) 2005-02-09 2014-03-04 Santen Pharmaceutical Co., Ltd. Formulations for treating ocular diseases and conditions
US8735394B2 (en) 2005-02-18 2014-05-27 Abraxis Bioscience, Llc Combinations and modes of administration of therapeutic agents and combination therapy
CA3054535A1 (en) 2005-02-18 2006-08-24 Abraxis Bioscience, Llc Combinations and modes of administration of therapeutic agents and combination therapy
AU2005100176A4 (en) * 2005-03-01 2005-04-07 Gym Tv Pty Ltd Garbage bin clip
US7858183B2 (en) 2005-03-02 2010-12-28 Boston Scientific Scimed, Inc. Particles
US7727555B2 (en) 2005-03-02 2010-06-01 Boston Scientific Scimed, Inc. Particles
US20060224170A1 (en) * 2005-03-30 2006-10-05 Michael Duff Surgical marker clip and method for cholangiography
CA2604696C (en) 2005-04-15 2015-03-24 Interface Biologics, Inc. Polymer-biologically active agent complexes for localized delivery of said biologically active agent
US7963287B2 (en) 2005-04-28 2011-06-21 Boston Scientific Scimed, Inc. Tissue-treatment methods
JO3058B1 (ar) 2005-04-29 2017-03-15 Applied Molecular Evolution Inc الاجسام المضادة لمضادات -اي ال-6,تركيباتها طرقها واستعمالاتها
EP1879554B2 (en) 2005-05-09 2018-03-07 Biosphere Medical, S.A. Compositions and methods using microspheres and non-ionic contrast agents
US20060280787A1 (en) * 2005-06-14 2006-12-14 Baxter International Inc. Pharmaceutical formulation of the tubulin inhibitor indibulin for oral administration with improved pharmacokinetic properties, and process for the manufacture thereof
US20070004973A1 (en) * 2005-06-15 2007-01-04 Tan Sharon M L Tissue treatment methods
US20060286071A1 (en) * 2005-06-21 2006-12-21 Epstein Samuel J Therapeutic pastes for medical device coating
US9463426B2 (en) 2005-06-24 2016-10-11 Boston Scientific Scimed, Inc. Methods and systems for coating particles
US8187159B2 (en) 2005-07-22 2012-05-29 Biocompatibles, UK Therapeutic member including a rail used in brachytherapy and other radiation therapy
US7736293B2 (en) 2005-07-22 2010-06-15 Biocompatibles Uk Limited Implants for use in brachytherapy and other radiation therapy that resist migration and rotation
CA2618404A1 (en) * 2005-08-04 2007-02-15 Angiotech International Ag Block copolymer compositions and uses thereof
KR101643416B1 (ko) * 2005-08-31 2016-07-27 아브락시스 바이오사이언스, 엘엘씨 증가된 안정성을 가진 수 난용성 약물의 조성물 및 제조방법
PL3311805T3 (pl) 2005-08-31 2020-07-27 Abraxis Bioscience, Llc Kompozycje zawierające słabo rozpuszczalne w wodzie środki farmaceutyczne i środki przeciwdrobnoustrojowe
US8192483B2 (en) 2005-10-06 2012-06-05 Kaneka Corporation Stent to be placed in the living body
US8007509B2 (en) 2005-10-12 2011-08-30 Boston Scientific Scimed, Inc. Coil assemblies, components and methods
US8152839B2 (en) 2005-12-19 2012-04-10 Boston Scientific Scimed, Inc. Embolic coils
US8101197B2 (en) 2005-12-19 2012-01-24 Stryker Corporation Forming coils
US7501179B2 (en) * 2005-12-21 2009-03-10 Boston Scientific Scimed, Inc. Block copolymer particles
US7947368B2 (en) 2005-12-21 2011-05-24 Boston Scientific Scimed, Inc. Block copolymer particles
AU2007212271B2 (en) 2006-02-09 2012-11-01 Santen Pharmaceutical Co., Ltd. Stable formulations, and methods of their preparation and use
CN100464736C (zh) * 2006-03-17 2009-03-04 山东蓝金生物工程有限公司 同载抗代谢药物及其增效剂的抗癌缓释注射剂
BRPI0709016A2 (pt) 2006-03-23 2011-06-21 Macusight Inc formulações e métodos para doenças ou condições relacionadas com a permeabilidade vascular
US7993675B2 (en) 2006-05-10 2011-08-09 Medtronic Xomed, Inc. Solvating system and sealant for medical use in the sinuses and nasal passages
EP2094268A2 (en) * 2006-05-26 2009-09-02 Bayer HealthCare, LLC Drug combinations with substituted diaryl ureas for the treatment of cancer
US20070298069A1 (en) * 2006-06-26 2007-12-27 Boston Scientific Scimed, Inc. Medical devices for release of low solubility therapeutic agents
EP2035074A4 (en) 2006-06-30 2012-11-07 Cvdevices Llc PERCUTANEOUS INTRAVASCULAR ACCESS TO CARDIAC TISSUE
WO2008134245A1 (en) * 2007-04-27 2008-11-06 Cvdevices, Llc Devices, systems, and methods for promotion of infarct healing and reinforcement of border zone
US8211084B2 (en) * 2006-06-30 2012-07-03 Cvdevices, Llc Devices, systems, and methods for accessing the epicardial surface of the heart
US9023075B2 (en) * 2006-06-30 2015-05-05 Cvdevices, Llc Devices, systems, and methods for lead delivery
US20080051702A1 (en) * 2006-08-24 2008-02-28 Herrmann Robert A Therapeutic agent delivery for the treatment of asthma via implantable and insertable medical devices
CN101541354B (zh) 2006-10-10 2012-11-21 西洛诺瓦生物科学公司 含聚磷氮烯的生物人工心瓣膜
US20080095816A1 (en) * 2006-10-10 2008-04-24 Celonova Biosciences, Inc. Compositions and Devices Comprising Silicone and Specific Polyphosphazenes
US20080167592A1 (en) * 2006-10-26 2008-07-10 Greer Steven E Preventing or treating wounds with a collodion barrier incorporating active agents
US8414927B2 (en) 2006-11-03 2013-04-09 Boston Scientific Scimed, Inc. Cross-linked polymer particles
EP2409687B1 (en) 2006-11-09 2014-06-11 Alcon Research, Ltd. Water insoluble polymer matrix for drug delivery
CA2669642A1 (en) * 2006-11-09 2008-05-22 Alcon Research, Ltd. Punctal plug comprising a water-insoluble polymeric matrix
US8998846B2 (en) 2006-11-20 2015-04-07 Lutonix, Inc. Drug releasing coatings for balloon catheters
US8414910B2 (en) 2006-11-20 2013-04-09 Lutonix, Inc. Drug releasing coatings for medical devices
US9737640B2 (en) 2006-11-20 2017-08-22 Lutonix, Inc. Drug releasing coatings for medical devices
US8414525B2 (en) 2006-11-20 2013-04-09 Lutonix, Inc. Drug releasing coatings for medical devices
US20080276935A1 (en) 2006-11-20 2008-11-13 Lixiao Wang Treatment of asthma and chronic obstructive pulmonary disease with anti-proliferate and anti-inflammatory drugs
US8414526B2 (en) 2006-11-20 2013-04-09 Lutonix, Inc. Medical device rapid drug releasing coatings comprising oils, fatty acids, and/or lipids
US9700704B2 (en) 2006-11-20 2017-07-11 Lutonix, Inc. Drug releasing coatings for balloon catheters
US20080175887A1 (en) * 2006-11-20 2008-07-24 Lixiao Wang Treatment of Asthma and Chronic Obstructive Pulmonary Disease With Anti-proliferate and Anti-inflammatory Drugs
US8425459B2 (en) 2006-11-20 2013-04-23 Lutonix, Inc. Medical device rapid drug releasing coatings comprising a therapeutic agent and a contrast agent
US20080171068A1 (en) * 2007-01-17 2008-07-17 Etcetera Llc Antimicrobial, infection-control and odor-control film and film composite
DE102007003184A1 (de) 2007-01-22 2008-07-24 Orlowski, Michael, Dr. Verfahren zur Beladung von strukturierten Oberflächen
WO2008097511A2 (en) 2007-02-07 2008-08-14 Cook Incorporated Medical device coatings for releasing a therapeutic agent at multiple rates
US8088095B2 (en) 2007-02-08 2012-01-03 Medtronic Xomed, Inc. Polymeric sealant for medical use
AU2008223387B2 (en) * 2007-03-06 2014-03-06 Covidien Lp Wound closure material
US9888924B2 (en) * 2007-03-06 2018-02-13 Covidien Lp Wound closure material
US20100076489A1 (en) * 2007-03-06 2010-03-25 Joshua Stopek Wound closure material
US9375164B2 (en) 2007-03-08 2016-06-28 Sync-Rx, Ltd. Co-use of endoluminal data and extraluminal imaging
US9968256B2 (en) 2007-03-08 2018-05-15 Sync-Rx Ltd. Automatic identification of a tool
US9305334B2 (en) 2007-03-08 2016-04-05 Sync-Rx, Ltd. Luminal background cleaning
US9629571B2 (en) 2007-03-08 2017-04-25 Sync-Rx, Ltd. Co-use of endoluminal data and extraluminal imaging
JP5639764B2 (ja) 2007-03-08 2014-12-10 シンク−アールエックス，リミティド 運動する器官と共に使用するイメージング及びツール
US11197651B2 (en) 2007-03-08 2021-12-14 Sync-Rx, Ltd. Identification and presentation of device-to-vessel relative motion
US11064964B2 (en) 2007-03-08 2021-07-20 Sync-Rx, Ltd Determining a characteristic of a lumen by measuring velocity of a contrast agent
US10716528B2 (en) 2007-03-08 2020-07-21 Sync-Rx, Ltd. Automatic display of previously-acquired endoluminal images
US8781193B2 (en) 2007-03-08 2014-07-15 Sync-Rx, Ltd. Automatic quantitative vessel analysis
US20080265343A1 (en) * 2007-04-26 2008-10-30 International Business Machines Corporation Field effect transistor with inverted t shaped gate electrode and methods for fabrication thereof
US9050064B2 (en) * 2007-04-27 2015-06-09 Cvdevices, Llc Systems for engaging a bodily tissue and methods of using the same
US8540674B2 (en) 2007-04-27 2013-09-24 Cvdevices, Llc Devices, systems, and methods for transeptal atrial puncture using an engagement catheter platform
JP5174891B2 (ja) 2007-04-27 2013-04-03 シーヴィ デヴァイシズ，エルエルシー 心臓の心外膜表面にアクセスするための装置、システム、および方法
GB2463181B (en) 2007-05-14 2013-03-27 Univ New York State Res Found Induction of a physiological dispersion response in bacterial cells in a biofilm
US8147769B1 (en) 2007-05-16 2012-04-03 Abbott Cardiovascular Systems Inc. Stent and delivery system with reduced chemical degradation
JP2008305262A (ja) * 2007-06-08 2008-12-18 Konica Minolta Business Technologies Inc サーバ及びシンクライアント環境でのプリンタ紹介方法
US9192697B2 (en) 2007-07-03 2015-11-24 Hemoteq Ag Balloon catheter for treating stenosis of body passages and for preventing threatening restenosis
US8003621B2 (en) * 2007-09-14 2011-08-23 Nitto Denko Corporation Drug carriers
EP2050441A1 (en) * 2007-10-19 2009-04-22 Université Victor Segalen Bordeaux 2 Use of beta blocker for the manufacture of a medicament for the treatment of hemangiomas
FR2922452B1 (fr) * 2007-10-19 2010-01-22 Coatex Sas Formulations de composes organoplatiniques en presence de polymeres associatifs, produits obtenus et leurs utilisations
US20090110730A1 (en) * 2007-10-30 2009-04-30 Celonova Biosciences, Inc. Loadable Polymeric Particles for Marking or Masking Individuals and Methods of Preparing and Using the Same
CA2713341C (en) * 2008-02-05 2016-09-27 Cvdevices, Llc Steering engagement catheter devices, systems, and methods
DE102008008263A1 (de) 2008-02-08 2009-08-13 Thomas Kuczera Restenoseprophylaxe
US8365432B2 (en) * 2008-03-19 2013-02-05 Morimoto-Pharma Co., Ltd. Freeze-drying method and freeze-drying apparatus
WO2009126705A2 (en) 2008-04-10 2009-10-15 Virginia Commonwealth University Induction of tumor hypoxia for cancer therapy
DE202008006190U1 (de) 2008-05-06 2008-07-17 Sellin, Lothar Restenoseprophylaxe
DE202008007347U1 (de) 2008-05-31 2008-10-16 Orlowski, Benjamin Daniel Kupfer Stent
WO2009152374A2 (en) 2008-06-12 2009-12-17 Medtronic Xomed, Inc. Method for treating chronic wounds
US8188235B2 (en) 2008-06-18 2012-05-29 Pfizer Inc. Antibodies to IL-6 and their uses
US20090319031A1 (en) * 2008-06-19 2009-12-24 Yunbing Wang Bioabsorbable Polymeric Stent With Improved Structural And Molecular Weight Integrity
ES2770273T3 (es) 2008-06-27 2020-07-01 Tepha Inc Administración inyectable de micropartículas y composiciones para ello
CA2729646C (en) 2008-07-03 2016-10-18 Vesseltek Biomedical, Llc Controlled and localized release of retinoids to improve neointimal hyperplasia
WO2010024898A2 (en) 2008-08-29 2010-03-04 Lutonix, Inc. Methods and apparatuses for coating balloon catheters
US8257722B2 (en) 2008-09-15 2012-09-04 Cv Ingenuity Corp. Local delivery of water-soluble or water-insoluble therapeutic agents to the surface of body lumens
US9198968B2 (en) 2008-09-15 2015-12-01 The Spectranetics Corporation Local delivery of water-soluble or water-insoluble therapeutic agents to the surface of body lumens
US8128951B2 (en) 2008-09-15 2012-03-06 Cv Ingenuity Corp. Local delivery of water-soluble or water-insoluble therapeutic agents to the surface of body lumens
US8114429B2 (en) 2008-09-15 2012-02-14 Cv Ingenuity Corp. Local delivery of water-soluble or water-insoluble therapeutic agents to the surface of body lumens
US20100070013A1 (en) * 2008-09-18 2010-03-18 Medtronic Vascular, Inc. Medical Device With Microsphere Drug Delivery System
US8076529B2 (en) 2008-09-26 2011-12-13 Abbott Cardiovascular Systems, Inc. Expandable member formed of a fibrous matrix for intraluminal drug delivery
US8226603B2 (en) 2008-09-25 2012-07-24 Abbott Cardiovascular Systems Inc. Expandable member having a covering formed of a fibrous matrix for intraluminal drug delivery
US8049061B2 (en) 2008-09-25 2011-11-01 Abbott Cardiovascular Systems, Inc. Expandable member formed of a fibrous matrix having hydrogel polymer for intraluminal drug delivery
US9782565B2 (en) 2008-10-01 2017-10-10 Covidien Lp Endoscopic ultrasound-guided biliary access system
US9186128B2 (en) 2008-10-01 2015-11-17 Covidien Lp Needle biopsy device
US9332973B2 (en) 2008-10-01 2016-05-10 Covidien Lp Needle biopsy device with exchangeable needle and integrated needle protection
US8968210B2 (en) 2008-10-01 2015-03-03 Covidien LLP Device for needle biopsy with integrated needle protection
US11298113B2 (en) 2008-10-01 2022-04-12 Covidien Lp Device for needle biopsy with integrated needle protection
US9101286B2 (en) 2008-11-18 2015-08-11 Sync-Rx, Ltd. Apparatus and methods for determining a dimension of a portion of a stack of endoluminal data points
US8855744B2 (en) 2008-11-18 2014-10-07 Sync-Rx, Ltd. Displaying a device within an endoluminal image stack
US9095313B2 (en) 2008-11-18 2015-08-04 Sync-Rx, Ltd. Accounting for non-uniform longitudinal motion during movement of an endoluminal imaging probe
US11064903B2 (en) 2008-11-18 2021-07-20 Sync-Rx, Ltd Apparatus and methods for mapping a sequence of images to a roadmap image
US9144394B2 (en) 2008-11-18 2015-09-29 Sync-Rx, Ltd. Apparatus and methods for determining a plurality of local calibration factors for an image
US10362962B2 (en) 2008-11-18 2019-07-30 Synx-Rx, Ltd. Accounting for skipped imaging locations during movement of an endoluminal imaging probe
US9974509B2 (en) 2008-11-18 2018-05-22 Sync-Rx Ltd. Image super enhancement
DE102009059070A1 (de) 2008-12-19 2010-07-01 Lothar Sellin Medizinische Einrichtung und Verfahren zu ihrer Herstellung
EP2210584A1 (en) * 2009-01-27 2010-07-28 Bayer Schering Pharma Aktiengesellschaft Stable polymeric composition comprising an epothilone and an amphiphilic block copolymer
WO2010093945A2 (en) 2009-02-13 2010-08-19 Glaukos Corporation Uveoscleral drug delivery implant and methods for implanting the same
JP4782850B2 (ja) * 2009-02-24 2011-09-28 シャープ株式会社 画像データ処理装置
US7828996B1 (en) * 2009-03-27 2010-11-09 Abbott Cardiovascular Systems Inc. Method for the manufacture of stable, nano-sized particles
WO2010114770A1 (en) * 2009-03-30 2010-10-07 Cerulean Pharma Inc. Polymer-agent conjugates, particles, compositions, and related methods of use
WO2010114768A1 (en) * 2009-03-30 2010-10-07 Cerulean Pharma Inc. Polymer-epothilone conjugates, particles, compositions, and related methods of use
AU2010234916A1 (en) * 2009-03-30 2011-10-13 Cerulean Pharma Inc. Polymer-agent conjugates, particles, compositions, and related methods of use
EP2243501A1 (en) 2009-04-24 2010-10-27 Eurocor Gmbh Shellac and paclitaxel coated catheter balloons
SG175373A1 (en) 2009-04-28 2011-11-28 Surmodics Inc Devices and methods for delivery of bioactive agents
US20100285085A1 (en) * 2009-05-07 2010-11-11 Abbott Cardiovascular Systems Inc. Balloon coating with drug transfer control via coating thickness
DE202009006632U1 (de) 2009-05-07 2009-07-16 Sellin, Lothar Beschichtung von medizinischen Oberflächen
WO2012071476A2 (en) 2010-11-24 2012-05-31 David Haffner Drug eluting ocular implant
US10206813B2 (en) 2009-05-18 2019-02-19 Dose Medical Corporation Implants with controlled drug delivery features and methods of using same
US20110319987A1 (en) 2009-05-20 2011-12-29 Arsenal Medical Medical implant
US8992601B2 (en) 2009-05-20 2015-03-31 480 Biomedical, Inc. Medical implants
WO2010135433A1 (en) * 2009-05-20 2010-11-25 Arsenal Medical, Inc. Medical implant
US9265633B2 (en) 2009-05-20 2016-02-23 480 Biomedical, Inc. Drug-eluting medical implants
US8888840B2 (en) * 2009-05-20 2014-11-18 Boston Scientific Scimed, Inc. Drug eluting medical implant
US9309347B2 (en) 2009-05-20 2016-04-12 Biomedical, Inc. Bioresorbable thermoset polyester/urethane elastomers
EP3064230B1 (en) 2009-07-10 2019-04-10 Boston Scientific Scimed, Inc. Use of nanocrystals for a drug delivery balloon
JP5933434B2 (ja) 2009-07-17 2016-06-08 ボストン サイエンティフィック サイムド，インコーポレイテッドＢｏｓｔｏｎ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｓｃｉｍｅｄ，Ｉｎｃ． 薬剤送達バルーンの製造方法
US8372133B2 (en) * 2009-10-05 2013-02-12 480 Biomedical, Inc. Polymeric implant delivery system
CA2777682C (en) 2009-10-13 2015-02-24 The Regents Of The University Of Michigan Dendrimer compositions and methods of synthesis
DE202009014776U1 (de) 2009-11-02 2010-03-11 Sellin, Lothar Beschichtung
CN106913902A (zh) 2009-11-09 2017-07-04 聚光灯技术合伙有限责任公司 多糖基水凝胶
CN107033368A (zh) 2009-11-09 2017-08-11 聚光灯技术合伙有限责任公司 碎裂水凝胶
CA3037168A1 (en) 2009-12-18 2011-06-23 Interface Biologics, Inc. Local delivery of drugs from self assembled coatings
DE202009017490U1 (de) 2009-12-22 2010-04-08 Sellin, Lothar Weihrauch- und/oder Boswelliasäuren Beschichtung
US20110218606A1 (en) * 2010-03-02 2011-09-08 Medtronic Vascular, Inc. Methods for Stabilizing Femoral Vessels
US20110224720A1 (en) * 2010-03-11 2011-09-15 Cvdevices, Llc Devices, systems, and methods for closing a hole in cardiac tissue
WO2011119536A1 (en) 2010-03-22 2011-09-29 Abbott Cardiovascular Systems Inc. Stent delivery system having a fibrous matrix covering with improved stent retention
MX2012011155A (es) 2010-03-29 2012-12-05 Abraxis Bioscience Llc Metodos para mejorar suministros de farmacos y efectividad de agentes terapeuticos.
EP2552415B1 (en) 2010-03-29 2016-09-07 Abraxis BioScience, LLC Methods of treating cancer
US10413506B2 (en) 2010-04-03 2019-09-17 Praful Doshi Medical devices including medicaments and methods of making and using same including enhancing comfort, enhancing drug penetration, and treatment of myopia
WO2011133183A1 (en) * 2010-04-20 2011-10-27 University Of Utah Research Foundation Phase separation sprayed scaffold
CA2798084A1 (en) 2010-05-17 2011-11-24 Aerie Pharmaceuticals, Inc. Drug delivery devices for delivery of ocular therapeutic agents
US8858577B2 (en) 2010-05-19 2014-10-14 University Of Utah Research Foundation Tissue stabilization system
US8945156B2 (en) 2010-05-19 2015-02-03 University Of Utah Research Foundation Tissue fixation
NZ604029A (en) * 2010-06-02 2015-07-31 Abraxis Bioscience Llc Methods of treating bladder cancer
NZ706745A (en) 2010-06-04 2017-01-27 Abraxis Bioscience Llc Methods of treatment of pancreatic cancer
WO2012031236A1 (en) 2010-09-02 2012-03-08 Boston Scientific Scimed, Inc. Coating process for drug delivery balloons using heat-induced rewrap memory
US8884027B2 (en) 2010-10-22 2014-11-11 University Of Rochester Melampomagnolide B derivatives as antileukemic and cytotoxic agents
KR20140009278A (ko) 2010-12-02 2014-01-22 마루젠세이야쿠 가부시키가이샤 Ｔｉｅ２ 활성화제, 혈관내피증식인자(ＶＥＧＦ) 억제제, 혈관신생 억제제, 혈관 성숙화제, 혈관 정상화제, 혈관 안정화제 및 약제학적 조성물
CN103458903B (zh) * 2011-01-28 2017-07-04 Abk生物医学公司 不透射线的栓塞颗粒
US8852214B2 (en) 2011-02-04 2014-10-07 University Of Utah Research Foundation System for tissue fixation to bone
DE202011002713U1 (de) 2011-02-14 2011-04-14 Sellin, Lothar Biologisch abbaubare medizinische Beschichtung und deren Verwendung
US9861727B2 (en) 2011-05-20 2018-01-09 Surmodics, Inc. Delivery of hydrophobic active agent particles
US9757497B2 (en) 2011-05-20 2017-09-12 Surmodics, Inc. Delivery of coated hydrophobic active agent particles
US10213529B2 (en) 2011-05-20 2019-02-26 Surmodics, Inc. Delivery of coated hydrophobic active agent particles
US10245178B1 (en) 2011-06-07 2019-04-02 Glaukos Corporation Anterior chamber drug-eluting ocular implant
US9056152B2 (en) 2011-08-25 2015-06-16 Boston Scientific Scimed, Inc. Medical device with crystalline drug coating
EP2574918B1 (de) 2011-09-28 2014-12-10 Mems Ag Mikrothermisches Verfahren und Sensor zur Bestimmung physikalischer Gaseigenschaften
DE202011106744U1 (de) 2011-10-15 2011-11-11 Lothar Sellin Bessere Bioverfügbarkeit von Shellac/Paclitaxel Beschichtungen
US20130197657A1 (en) * 2011-12-08 2013-08-01 Diana Anca Central airway stent
US20130245759A1 (en) * 2012-03-09 2013-09-19 The Florida International University Board Of Trustees Medical devices incorporating silicone nanoparticles, and uses thereof
CA2899735A1 (en) * 2012-05-21 2013-11-28 Sync-Rx, Ltd. Co-use of endoluminal data and extraluminal imaging
US20130317622A1 (en) * 2012-05-25 2013-11-28 Antonio Sambusseti Surgical method for grafting an artificial implant in a bladder and/or in a urethral or ureteral segment
EP2855030B1 (en) 2012-06-01 2019-08-21 SurModics, Inc. Apparatus and method for coating balloon catheters
US9827401B2 (en) 2012-06-01 2017-11-28 Surmodics, Inc. Apparatus and methods for coating medical devices
EP2863802B1 (en) 2012-06-26 2020-11-04 Sync-RX, Ltd. Flow-related image processing in luminal organs
US9956385B2 (en) 2012-06-28 2018-05-01 The Spectranetics Corporation Post-processing of a medical device to control morphology and mechanical properties
WO2014008875A1 (de) 2012-07-12 2014-01-16 Cardionovum Gmbh Katheterballon, verfahren zur herstellung eines beschichteten katheterballons sowie verwendung des pharmakologischen wirkstoffs
US11957334B2 (en) 2012-07-30 2024-04-16 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US9629632B2 (en) 2012-07-30 2017-04-25 Conextions, Inc. Soft tissue repair devices, systems, and methods
US11253252B2 (en) 2012-07-30 2022-02-22 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US10390935B2 (en) 2012-07-30 2019-08-27 Conextions, Inc. Soft tissue to bone repair devices, systems, and methods
US9427309B2 (en) 2012-07-30 2016-08-30 Conextions, Inc. Soft tissue repair devices, systems, and methods
US10219804B2 (en) 2012-07-30 2019-03-05 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US10835241B2 (en) 2012-07-30 2020-11-17 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US11944531B2 (en) 2012-07-30 2024-04-02 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
CN107043561B (zh) 2012-10-29 2019-10-11 阿里斯特医疗有限责任公司 聚合物涂料组合物和涂覆的产品
JP6438406B2 (ja) 2012-11-05 2018-12-12 サーモディクス，インコーポレイテッド 疎水性生理活性物質を送達するための組成物および方法
US11246963B2 (en) 2012-11-05 2022-02-15 Surmodics, Inc. Compositions and methods for delivery of hydrophobic active agents
RU2528249C2 (ru) * 2012-11-23 2014-09-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова" (МГУ) Способ подавления ангиогенеза с помощью рекомбинантных форм урокиназы
US20140212355A1 (en) * 2013-01-28 2014-07-31 Abbott Cardiovascular Systems Inc. Trans-arterial drug delivery
JP6350833B2 (ja) * 2013-03-15 2018-07-04 マイクロテック メディカル テクノロジーズ リミテッド 植込固定具
DE202013002567U1 (de) 2013-03-18 2013-05-07 Lothar Sellin NABP - Beschichtung
US9504653B2 (en) 2013-04-01 2016-11-29 Allergan, Inc. Microsphere drug delivery system for sustained intraocular release
EP3060143B1 (en) * 2013-10-25 2021-01-06 Mercator Medsystems, Inc. Maintenance of bronchial patency by local delivery of cytotoxic, cytostatic, or anti-neoplastic agent
US10842969B2 (en) 2013-10-25 2020-11-24 Mercator Medsystems, Inc. Systems and methods of treating malacia by local delivery of hydrogel to augment tissue
US10525171B2 (en) 2014-01-24 2020-01-07 The Spectranetics Corporation Coatings for medical devices
US11583384B2 (en) 2014-03-12 2023-02-21 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
EP3119448B1 (en) 2014-03-21 2020-04-22 University of Pittsburgh- Of the Commonwealth System of Higher Education Methods for preparation of a terminally sterilized hydrogel derived from extracellular matrix
CN106471074A (zh) 2014-04-22 2017-03-01 阿里斯特医疗公司 用于施加药物递送聚合物涂料的方法和工艺
WO2015184173A1 (en) 2014-05-29 2015-12-03 Dose Medical Corporation Implants with controlled drug delivery features and methods of using same
KR20170054429A (ko) 2014-09-03 2017-05-17 제네세규스 인코포레이티드 치료용 나노입자 및 관련 조성물, 방법, 및 시스템
EP3223867B1 (en) 2014-11-26 2021-04-07 ABK Biomedical Incorporated Radioembolic particles
WO2016093412A1 (ko) * 2014-12-10 2016-06-16 주식회사 에이치제이메디칼 경동맥 화학색전술에 적용되는 인산염완충용액(PBS) 또는 인산버퍼(Phosphate Buffer)가 함유된 젤라틴 스폰지 및 이의 제조방법
DE202015002048U1 (de) 2015-03-16 2015-09-24 Han Bock-Sun Implantat
KR101620090B1 (ko) 2015-04-20 2016-05-12 주식회사 티젤바이오 약물전달 키트, 약물전달체 제조용 기구, 및 약물전달체 제조방법
BR112017026746B1 (pt) * 2015-06-18 2023-11-28 Acuitybio Corporation Composições de liberação de fármacos implantáveis e uso de uma mistura compreendendo copolímero de plga, peg 8000 e paclitaxel
KR101748120B1 (ko) * 2015-07-13 2017-06-16 서울대학교산학협력단 나노입자-유리체 기반 단백질 복합체를 유효성분으로 포함하는 혈관신생억제용 조성물 및 이의 용도
US11925578B2 (en) 2015-09-02 2024-03-12 Glaukos Corporation Drug delivery implants with bi-directional delivery capacity
CA2998483C (en) 2015-09-16 2022-09-06 Dfb Soria, Llc Delivery of drug nanoparticles and methods of use thereof
US11564833B2 (en) 2015-09-25 2023-01-31 Glaukos Corporation Punctal implants with controlled drug delivery features and methods of using same
WO2017066121A1 (en) * 2015-10-12 2017-04-20 Toth, Landy Controlled and precise treatment of cardiac tissues
EP3402876B1 (en) 2016-01-13 2021-10-13 University of Pittsburgh- Of the Commonwealth System of Higher Education Vascular extracellular matrix hydrogel
CN109937025B (zh) 2016-04-20 2022-07-29 多斯医学公司 生物可吸收眼部药物的递送装置
US11696822B2 (en) 2016-09-28 2023-07-11 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US10898446B2 (en) 2016-12-20 2021-01-26 Surmodics, Inc. Delivery of hydrophobic active agents from hydrophilic polyether block amide copolymer surfaces
WO2018170196A1 (en) 2017-03-15 2018-09-20 Dfb Soria, Llc Topical therapy for the treatment of skin malignancies using nanoparticles of taxanes
US11634400B2 (en) 2017-08-19 2023-04-25 University Of Rochester Micheliolide derivatives, methods for their preparation and their use as anticancer and antiinflammatory agents
US11547397B2 (en) 2017-12-20 2023-01-10 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US12102317B2 (en) 2017-12-20 2024-10-01 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US10973509B2 (en) 2017-12-20 2021-04-13 Conextions, Inc. Devices, systems, and methods for repairing soft tissue and attaching soft tissue to bone
US20190247638A1 (en) 2018-02-13 2019-08-15 Kieran P. Murphy Delivery system for delivering a drug depot to a target site under image guidance and methods and uses of same
CN112165949A (zh) 2018-03-16 2021-01-01 Dfb索里亚有限责任公司 使用紫杉烷纳米颗粒治疗宫颈上皮内瘤变(cin)和宫颈癌的局部疗法
CN112638436A (zh) 2018-05-22 2021-04-09 界面生物公司 用于将药物递送至血管壁的组合物和方法
CN109224119B (zh) * 2018-10-30 2021-02-23 北京大学深圳医院 一种π共轭纳米自组装颗粒瘤内注射栓塞肿瘤血管抗癌剂
WO2020112816A1 (en) 2018-11-29 2020-06-04 Surmodics, Inc. Apparatus and methods for coating medical devices
US11819590B2 (en) 2019-05-13 2023-11-21 Surmodics, Inc. Apparatus and methods for coating medical devices
CN111388757B (zh) * 2020-03-21 2022-07-15 哈尔滨工程大学 一种采用螺旋镁丝制备的可降解镁基复合材料
EP4262675A1 (en) 2020-12-17 2023-10-25 Mobius Therapeutics, LLC Injection apparatus and method of use

Family Cites Families (249)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3016308A (en) 1957-08-06 1962-01-09 Moore Business Forms Inc Recording paper coated with microscopic capsules of coloring material, capsules and method of making
US3029188A (en) 1958-02-20 1962-04-10 Olin Mathieson Gelatin adhesive pharmaceutical preparations
US3991527A (en) 1975-07-10 1976-11-16 Bates Abrasive Products, Inc. Coated abrasive disc
USRE30239E (en) 1975-11-10 1980-03-25 Cell proliferation and tissue invasion inhibitor
US4042457A (en) 1975-11-10 1977-08-16 Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center Preparation of tissue invasion inhibitor and method of treatment utilizing the inhibitor
US4391797A (en) 1977-01-05 1983-07-05 The Children's Hospital Medical Center Systems for the controlled release of macromolecules
US4176177A (en) 1978-11-16 1979-11-27 Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center Inhibition of bone resorption
US4416877A (en) 1979-02-13 1983-11-22 Symphar S.A. Anti-atherosclerotic pharmaceutical compositions containing diphosphonate compounds
US4300244A (en) 1979-09-19 1981-11-17 Carbomedics, Inc. Cardiovascular grafts
US4356261A (en) 1980-04-22 1982-10-26 Rush-Presbyterian-St. Luke's Medical Center Anti-invasion factor containing cultures
US4531936A (en) * 1981-01-29 1985-07-30 Gordon Robert T Device and method for the selective delivery of drugs to the myocardium
US4768523A (en) 1981-04-29 1988-09-06 Lifecore Biomedical, Inc. Hydrogel adhesive
US4357312A (en) 1981-07-16 1982-11-02 The Children's Hospital Medical Center Method of making prolonged release body
US4534899A (en) * 1981-07-20 1985-08-13 Lipid Specialties, Inc. Synthetic phospholipid compounds
US5441745A (en) 1982-03-30 1995-08-15 Vestar, Inc. Method of delivering micellular particles encapsulating chemotherapeutic agents to tumors in a body
US4542025A (en) 1982-07-29 1985-09-17 The Stolle Research And Development Corporation Injectable, long-acting microparticle formulation for the delivery of anti-inflammatory agents
US5001116A (en) 1982-12-20 1991-03-19 The Children's Medical Center Corporation Inhibition of angiogenesis
US4994443A (en) 1982-12-20 1991-02-19 The Children's Medical Center Corporation Inhibition of angiogenesis
US4906474A (en) 1983-03-22 1990-03-06 Massachusetts Institute Of Technology Bioerodible polyanhydrides for controlled drug delivery
US5286763A (en) 1983-03-22 1994-02-15 Massachusetts Institute Of Technology Bioerodible polymers for drug delivery in bone
US4834755A (en) 1983-04-04 1989-05-30 Pfizer Hospital Products Group, Inc. Triaxially-braided fabric prosthesis
US4959358A (en) 1983-06-06 1990-09-25 Beth Israel Hospital Assn. Drug administration
US4500676A (en) 1983-12-15 1985-02-19 Biomatrix, Inc. Hyaluronate modified polymeric articles
GB8334484D0 (en) 1983-12-24 1984-02-01 Smith & Nephew Ass Surgical dressing
US4591496A (en) 1984-01-16 1986-05-27 Massachusetts Institute Of Technology Process for making systems for the controlled release of macromolecules
IL74715A0 (en) 1984-03-27 1985-06-30 Univ New Jersey Med Biodegradable matrix and methods for producing same
US4779806A (en) 1984-07-23 1988-10-25 Massachusetts Institute Of Technology Ultrasonically modulated polymeric devices for delivering compositions
US4580568A (en) 1984-10-01 1986-04-08 Cook, Incorporated Percutaneous endovascular stent and method for insertion thereof
US4789501A (en) 1984-11-19 1988-12-06 The Curators Of The University Of Missouri Glass microspheres
US5128326A (en) 1984-12-06 1992-07-07 Biomatrix, Inc. Drug delivery systems based on hyaluronans derivatives thereof and their salts and methods of producing same
US4916219A (en) 1985-03-28 1990-04-10 University Of Iowa Research Foundation Oligosaccharide heparin fragments as inhibitors of complement cascade
US4824436A (en) * 1985-04-09 1989-04-25 Harvey Wolinsky Method for the prevention of restenosis
US4733665C2 (en) 1985-11-07 2002-01-29 Expandable Grafts Partnership Expandable intraluminal graft and method and apparatus for implanting an expandable intraluminal graft
US5102417A (en) 1985-11-07 1992-04-07 Expandable Grafts Partnership Expandable intraluminal graft, and method and apparatus for implanting an expandable intraluminal graft
US4771042A (en) 1985-11-25 1988-09-13 The Upjohn Company Inhibition of angiogenesis involving the coadministration of steroids with heparin or heparin fragments
GB8601100D0 (en) 1986-01-17 1986-02-19 Cosmas Damian Ltd Drug delivery system
US4806621A (en) 1986-01-21 1989-02-21 Massachusetts Institute Of Technology Biocompatible, bioerodible, hydrophobic, implantable polyimino carbonate article
DE3786721D1 (de) * 1986-02-24 1993-09-02 Fischell Robert Vorrichtung zum aufweisen von blutgefaessen, sowie system zu deren einfuehrung.
US4966890A (en) 1986-04-04 1990-10-30 Angiogenics, Ltd. Method and composition for arresting angiogenesis and capillary, cell or membrane leakage
US4955878A (en) * 1986-04-04 1990-09-11 Biotechnology, Inc. Kit for preventing or treating arterial dysfunction resulting from angioplasty procedures
US4746729A (en) 1986-07-30 1988-05-24 Kuettner Klaus E Cartilage-derived leukocyte elastase-inhibitor
US4882168A (en) 1986-09-05 1989-11-21 American Cyanamid Company Polyesters containing alkylene oxide blocks as drug delivery systems
GB2194885A (en) 1986-09-10 1988-03-23 Ephraim Kaplan Pharmaceutical compositions containing vanadium
US4893623A (en) 1986-12-09 1990-01-16 Advanced Surgical Intervention, Inc. Method and apparatus for treating hypertrophy of the prostate gland
CH673117A5 (ru) 1986-12-10 1990-02-15 Ajinomoto Kk
US5092885A (en) * 1987-02-12 1992-03-03 The Government Of The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Peptides with laminin activity
US5084441A (en) 1987-03-04 1992-01-28 Shaw Jack M Acetylated low density lipoproteins: a delivery system to phagocytic cells for stimulating immunologic response and host resistance
US5041126A (en) 1987-03-13 1991-08-20 Cook Incorporated Endovascular stent and delivery system
US4800882A (en) 1987-03-13 1989-01-31 Cook Incorporated Endovascular stent and delivery system
US4861627A (en) 1987-05-01 1989-08-29 Massachusetts Institute Of Technology Preparation of multiwall polymeric microcapsules
US4808402A (en) 1987-05-29 1989-02-28 Northwestern University Method and compositions for modulating neovascularization
NL8701337A (nl) 1987-06-09 1989-01-02 Sentron V O F Substraat voorzien van een bloedcompatibel oppervlak, verkregen door koppeling aan het oppervlak van een fysiologisch aktieve stof met remmende invloed op de vorming van bloedstolsels en/of in staat om gevormde bloedstolsels af te breken, alsmede werkwijze ter vervaardiging van het substraat.
US5059211A (en) * 1987-06-25 1991-10-22 Duke University Absorbable vascular stent
US4829099A (en) 1987-07-17 1989-05-09 Bioresearch, Inc. Metabolically acceptable polyisocyanate adhesives
US5019379A (en) 1987-07-31 1991-05-28 Massachusetts Institute Of Technology Unsaturated polyanhydrides
GB8720440D0 (en) 1987-08-28 1987-10-07 Smith & Nephew Ass Curable compositions
US5001009A (en) 1987-09-02 1991-03-19 Sterilization Technical Services, Inc. Lubricious hydrophilic composite coated on substrates
US5059189A (en) 1987-09-08 1991-10-22 E. R. Squibb & Sons, Inc. Method of preparing adhesive dressings containing a pharmaceutically active ingredient
US4983395A (en) 1987-11-12 1991-01-08 Theratech Inc. Device for administering an active agent to the skin or mucosa
US5460817A (en) 1988-01-19 1995-10-24 Allied Colloids Ltd. Particulate composition comprising a core of matrix polymer with active ingredient distributed therein
DE68910113T2 (de) * 1988-01-19 1994-03-17 Childrens Hospital Corp Wachstuminhibierendes mittel und dessen verwendung.
US5135919A (en) * 1988-01-19 1992-08-04 Children's Medical Center Corporation Method and a pharmaceutical composition for the inhibition of angiogenesis
US5446070A (en) 1991-02-27 1995-08-29 Nover Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for topical administration of pharmaceutically active agents
US4942184A (en) 1988-03-07 1990-07-17 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Water soluble, antineoplastic derivatives of taxol
US5157049A (en) * 1988-03-07 1992-10-20 The United States Of America As Represented By The Department Of Health & Human Services Method of treating cancers sensitive to treatment with water soluble derivatives of taxol
JPH0722576B2 (ja) 1988-04-11 1995-03-15 三菱電機株式会社 磁気共鳴装置
US4989601A (en) * 1988-05-02 1991-02-05 Medical Engineering & Development Institute, Inc. Method, apparatus, and substance for treating tissue having neoplastic cells
ATE145337T1 (de) 1988-05-02 1996-12-15 Phanos Tech Inc Verbindungen, zusammensetzungen und verfahren zum binden von bio-affektions-substanzen an oberflächenmembranen von bioteilchen
US5096892A (en) 1988-05-27 1992-03-17 The Children's Medical Center Corporation Arylsulfatase inhibition and potentiation of angiostatic steroids and heparin
US5100668A (en) 1988-06-14 1992-03-31 Massachusetts Institute Of Technology Controlled release systems containing heparin and growth factors
JPH0643336B2 (ja) 1988-06-30 1994-06-08 呉羽化学工業株式会社 血管増殖抑制剤
DE3825374A1 (de) * 1988-07-26 1990-02-01 Schwendener Reto Dipl Apotheke Komplex aus mindestens einer lipophilen saeure und mitoxantron und/oder bisantren
US4966605A (en) 1988-07-28 1990-10-30 Thieler William R Method for opening and closing surgical wounds
JPH0255064A (ja) * 1988-08-03 1990-02-23 Toa O カテーテルを用いた血管内血栓の血栓除去装置
US5213580A (en) 1988-08-24 1993-05-25 Endoluminal Therapeutics, Inc. Biodegradable polymeric endoluminal sealing process
US5019090A (en) * 1988-09-01 1991-05-28 Corvita Corporation Radially expandable endoprosthesis and the like
US5053048A (en) * 1988-09-22 1991-10-01 Cordis Corporation Thromboresistant coating
US5252713A (en) * 1988-09-23 1993-10-12 Neorx Corporation Polymeric carriers for non-covalent drug conjugation
US4938763B1 (en) 1988-10-03 1995-07-04 Atrix Lab Inc Biodegradable in-situ forming implants and method of producing the same
US5091176A (en) 1988-11-02 1992-02-25 W. R. Grace & Co.-Conn. Polymer-modified peptide drugs having enhanced biological and pharmacological activities
US5211657A (en) * 1988-11-07 1993-05-18 The United States Government As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services Laminin a chain deduced amino acid sequence, expression vectors and active synthetic peptides
LU87410A1 (fr) 1988-12-20 1990-07-10 Cird Composition cosmetique ou pharmaceutique contenant des microspheres de polymeres ou de corps gras chargees d'au moins un produit actif
US5086164A (en) 1989-01-10 1992-02-04 Repligen Corporation Novel methods and compositions for treatment of angiogenic diseases
US5356630A (en) 1989-02-22 1994-10-18 Massachusetts Institute Of Technology Delivery system for controlled release of bioactive factors
US4960790A (en) 1989-03-09 1990-10-02 University Of Kansas Derivatives of taxol, pharmaceutical compositions thereof and methods for the preparation thereof
US4905694A (en) 1989-04-04 1990-03-06 Ethicon, Inc. Intracorporeal temporary wound closure
WO1990013332A1 (en) * 1989-05-11 1990-11-15 Cedars-Sinai Medical Center Stent with sustained drug delivery
US5132315A (en) 1989-05-19 1992-07-21 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Therapeutic application of an anti-invasive compound
AU648505B2 (en) * 1989-05-19 1994-04-28 Amgen, Inc. Metalloproteinase inhibitor
US4990155A (en) * 1989-05-19 1991-02-05 Wilkoff Howard M Surgical stent method and apparatus
US5171262A (en) 1989-06-15 1992-12-15 Cordis Corporation Non-woven endoprosthesis
CA2015946A1 (en) * 1989-06-27 1990-12-27 Lawrence P. Klemann Diol lipid analogues as edible fat replacements
US5290807A (en) 1989-08-10 1994-03-01 Children's Medical Center Corporation Method for regressing angiogenesis using o-substituted fumagillol derivatives
EP0415294A3 (en) * 1989-08-31 1991-06-12 Takeda Chemical Industries, Ltd. Cyclohexanol derivatives, production and use thereof
CA1340994C (en) * 1989-09-21 2000-05-16 Rudolf Edgar Dr. Falk Treatment of conditions and disease
JPH03109324A (ja) 1989-09-22 1991-05-09 Microbial Chem Res Found 血管新生阻害剤
US5461081A (en) 1989-09-28 1995-10-24 Alcon Laboratories, Inc. Topical ophthalmic pharmaceutical vehicles
US5525348A (en) 1989-11-02 1996-06-11 Sts Biopolymers, Inc. Coating compositions comprising pharmaceutical agents
US5120548A (en) 1989-11-07 1992-06-09 Merck & Co., Inc. Swelling modulated polymeric drug delivery device
US5527532A (en) 1989-11-13 1996-06-18 President And Fellows Of Harvard College Extraluminal regulation of the growth and repair of tubular structures in vivo
WO1991007154A1 (en) 1989-11-13 1991-05-30 President And Fellows Of Harvard College EXTRALUMINAL REGULATION OF THE GROWTH AND REPAIR OF TUBULAR STRUCTURES ιIN VIVO
US5059166A (en) 1989-12-11 1991-10-22 Medical Innovative Technologies R & D Limited Partnership Intra-arterial stent with the capability to inhibit intimal hyperplasia
US5176617A (en) * 1989-12-11 1993-01-05 Medical Innovative Technologies R & D Limited Partnership Use of a stent with the capability to inhibit malignant growth in a vessel such as a biliary duct
US5439446A (en) 1994-06-30 1995-08-08 Boston Scientific Corporation Stent and therapeutic delivery system
US5304121A (en) 1990-12-28 1994-04-19 Boston Scientific Corporation Drug delivery system making use of a hydrogel polymer coating
US5049132A (en) * 1990-01-08 1991-09-17 Cordis Corporation Balloon catheter for delivering therapeutic agents
US5192744A (en) * 1990-01-12 1993-03-09 Northwestern University Method of inhibiting angiogenesis of tumors
EP0512071B1 (en) * 1990-01-25 1996-10-30 Children's Hospital Method and compositions for inhibiting angiogenesis
DE69108423T2 (de) 1990-02-08 1995-07-27 Howmedica Aufblasbarer Dilatator.
US5075112A (en) 1990-02-12 1991-12-24 Cartilage Technologies Inc. Method of and dosage unit for inhibiting angiogenesis or vascularization in an animal using shark cartilage
US5200397A (en) 1990-02-22 1993-04-06 W. R. Grace & Co.-Conn. Use of peptide analogs of thrombospondin for the inhibition of angiogenic activity
US5545208A (en) 1990-02-28 1996-08-13 Medtronic, Inc. Intralumenal drug eluting prosthesis
EP0470246B1 (en) 1990-02-28 1995-06-28 Medtronic, Inc. Intralumenal drug eluting prosthesis
DE4006609A1 (de) 1990-03-02 1991-09-26 Max Planck Gesellschaft Inhibitor der proliferation von endothelzellen
US5052998A (en) 1990-04-04 1991-10-01 Zimmon David S Indwelling stent and method of use
EP0528971B1 (en) 1990-05-14 1999-09-01 JERNBERG, Gary R. Surgical implant and method incorporating chemotherapeutic agents
US5219564A (en) 1990-07-06 1993-06-15 Enzon, Inc. Poly(alkylene oxide) amino acid copolymers and drug carriers and charged copolymers based thereon
US5290271A (en) * 1990-05-14 1994-03-01 Jernberg Gary R Surgical implant and method for controlled release of chemotherapeutic agents
US5092841A (en) * 1990-05-17 1992-03-03 Wayne State University Method for treating an arterial wall injured during angioplasty
WO1991017724A1 (en) 1990-05-17 1991-11-28 Harbor Medical Devices, Inc. Medical device polymer
US5407683A (en) 1990-06-01 1995-04-18 Research Corporation Technologies, Inc. Pharmaceutical solutions and emulsions containing taxol
DE69110467T2 (de) * 1990-06-15 1996-02-01 Cortrak Medical Inc Vorrichtung zur abgabe von medikamenten.
US5462751A (en) 1990-06-22 1995-10-31 The Regeants Of The University Of California Biological and pharmaceutical agents having a nanomeric biodegradable core
US5064435A (en) 1990-06-28 1991-11-12 Schneider (Usa) Inc. Self-expanding prosthesis having stable axial length
EP0470569B1 (en) * 1990-08-08 1995-11-22 Takeda Chemical Industries, Ltd. Intravascular embolizing agent containing angiogenesis inhibiting substance
JP3120187B2 (ja) * 1990-08-08 2000-12-25 武田薬品工業株式会社 血管新生阻害物質を含む血管内塞栓剤
US5210155A (en) * 1990-08-24 1993-05-11 Exxon Chemical Patents Inc. Phenol terminated diester compositions derived from dicarboxylic acids, polyester polymers or alkyd polymers, and curable compositions containing same
US5278324A (en) 1990-08-28 1994-01-11 Virginia Tech Intellectual Properties, Inc. Water soluble derivatives of taxol
ZA918168B (en) 1990-10-16 1993-04-14 Takeda Chemical Industries Ltd Prolonged release preparation and polymers thereof.
DE69116130T2 (de) * 1990-10-18 1996-05-15 Ho Young Song Selbstexpandierender, endovaskulärer dilatator
WO1992006701A1 (en) 1990-10-18 1992-04-30 Huffstutler, M., Conrad, Jr. Preparation of concentrated fluid symphytum extracts, therapeutic forms and methods of use
US5360789A (en) 1990-11-20 1994-11-01 Kowa Co., Ltd. Therapeutic agent for skin or corneal disease
US5268384A (en) 1990-11-21 1993-12-07 Galardy Richard E Inhibition of angiogenesis by synthetic matrix metalloprotease inhibitors
JP2928892B2 (ja) 1990-11-27 1999-08-03 三洋化成工業株式会社 外科用接着剤
US5149368A (en) 1991-01-10 1992-09-22 Liu Sung Tsuen Resorbable bioactive calcium phosphate cement
WO1992012717A2 (en) * 1991-01-15 1992-08-06 A composition containing a tetracycline and use for inhibiting angiogenesis
AU1579092A (en) * 1991-02-27 1992-10-06 Nova Pharmaceutical Corporation Anti-infective and anti-inflammatory releasing systems for medical devices
US5540928A (en) 1991-02-27 1996-07-30 President And Fellows Of Harvard College Extraluminal regulation of the growth and repair of tubular structures in vivo
US5171217A (en) 1991-02-28 1992-12-15 Indiana University Foundation Method for delivery of smooth muscle cell inhibitors
KR0177492B1 (ko) * 1991-03-08 1999-05-01 케이지 이가키 맥관 스텐트, 맥관 스텐트 유지 구조체 및 맥관 스텐트 삽입 고착장치
IT1250421B (it) 1991-05-30 1995-04-07 Recordati Chem Pharm Composizione farmaceutica a rilascio controllato con proprieta' bio-adesive.
US5147370A (en) 1991-06-12 1992-09-15 Mcnamara Thomas O Nitinol stent for hollow body conduits
US5330768A (en) 1991-07-05 1994-07-19 Massachusetts Institute Of Technology Controlled drug delivery using polymer/pluronic blends
FR2678833B1 (fr) 1991-07-08 1995-04-07 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouvelles compositions pharmaceutiques a base de derives de la classe des taxanes.
US5344644A (en) 1991-08-01 1994-09-06 Takeda Chemical Industries, Ltd. Water-soluble composition for sustained-release
JPH0558882A (ja) * 1991-09-04 1993-03-09 Yoshiaki Kawashima ナノカプセルの製造法
US5283253A (en) 1991-09-23 1994-02-01 Florida State University Furyl or thienyl carbonyl substituted taxanes and pharmaceutical compositions containing them
US5229526A (en) 1991-09-23 1993-07-20 Florida State University Metal alkoxides
US5811447A (en) 1993-01-28 1998-09-22 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US6515009B1 (en) 1991-09-27 2003-02-04 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
WO1993006792A1 (en) * 1991-10-04 1993-04-15 Scimed Life Systems, Inc. Biodegradable drug delivery vascular stent
US5464450A (en) 1991-10-04 1995-11-07 Scimed Lifesystems Inc. Biodegradable drug delivery vascular stent
CA2079417C (en) 1991-10-28 2003-01-07 Lilip Lau Expandable stents and method of making same
US5318780A (en) 1991-10-30 1994-06-07 Mediventures Inc. Medical uses of in situ formed gels
JPH05131753A (ja) * 1991-11-15 1993-05-28 Fujicopian Co Ltd 多数回使用可能な熱転写インクシート
US5302397A (en) 1991-11-19 1994-04-12 Amsden Brian G Polymer-based drug delivery system
US5270047A (en) * 1991-11-21 1993-12-14 Kauffman Raymond F Local delivery of dipyridamole for the treatment of proliferative diseases
WO1993010076A1 (en) 1991-11-22 1993-05-27 The University Of Mississippi Synthesis and optical resolution of the taxol side chain and related compounds
CA2124329C (en) * 1991-11-27 2008-11-18 Gregory A. Kopia Compounds, compositions and methods for binding bio-affecting substances to surface membranes of bio-particles
US5260002A (en) 1991-12-23 1993-11-09 Vanderbilt University Method and apparatus for producing uniform polymeric spheres
CA2086642C (en) 1992-01-09 2004-06-15 Randall E. Morris Method of treating hyperproliferative vascular disease
US5516781A (en) 1992-01-09 1996-05-14 American Home Products Corporation Method of treating restenosis with rapamycin
US5176626A (en) 1992-01-15 1993-01-05 Wilson-Cook Medical, Inc. Indwelling stent
US5260066A (en) 1992-01-16 1993-11-09 Srchem Incorporated Cryogel bandage containing therapeutic agent
US6080777A (en) 1992-01-31 2000-06-27 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Taxol as a radiation sensitizer
US5301664A (en) 1992-03-06 1994-04-12 Sievers Robert E Methods and apparatus for drug delivery using supercritical solutions
US5200534A (en) 1992-03-13 1993-04-06 University Of Florida Process for the preparation of taxol and 10-deacetyltaxol
DE69326631T2 (de) 1992-03-19 2000-06-08 Medtronic, Inc. Intraluminales Erweiterungsgerät
DK0706373T3 (da) 1992-03-23 2000-09-18 Univ Georgetown Liposomindkapslet taxol og en fremgangsmåde til anvendelse heraf
US5474765A (en) * 1992-03-23 1995-12-12 Ut Sw Medical Ctr At Dallas Preparation and use of steroid-polyanionic polymer-based conjugates targeted to vascular endothelial cells
AU670937B2 (en) 1992-04-28 1996-08-08 Wyeth Method of treating hyperproliferative vascular disease
DE4214215A1 (de) * 1992-04-30 1993-11-04 Behringwerke Ag Verwendung von inhibitoren von plasminogenaktivatoren zur behandlung von entzuendungen
US5461140A (en) 1992-04-30 1995-10-24 Pharmaceutical Delivery Systems Bioerodible polymers for solid controlled release pharmaceutical compositions
WO1993023075A1 (en) * 1992-05-14 1993-11-25 Oncologix, Inc. Treatment of vascular leakage syndrome and collagenase induced disease by administration of matrix metalloproteinase inhibitors
JPH08500973A (ja) 1992-05-21 1996-02-06 ザ ペン ステイト リサーチ ファウンデーション タキソール、関連タキサン及び他の新規な抗癌／抗ウイルス性化合物原料としてのイチイ培養組織
WO1993024476A1 (en) 1992-06-04 1993-12-09 Clover Consolidated, Limited Water-soluble polymeric carriers for drug delivery
US5383928A (en) * 1992-06-10 1995-01-24 Emory University Stent sheath for local drug delivery
GB9213077D0 (en) 1992-06-19 1992-08-05 Erba Carlo Spa Polymerbound taxol derivatives
US5274137A (en) 1992-06-23 1993-12-28 Nicolaou K C Intermediates for preparation of taxols
US5294637A (en) 1992-07-01 1994-03-15 Bristol-Myers Squibb Company Fluoro taxols
US5273965A (en) 1992-07-02 1993-12-28 Cambridge Biotech Corporation Methods for enhancing drug delivery with modified saponins
FR2693193B1 (fr) * 1992-07-03 1994-09-02 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux dérivés de la désacétyl-10 baccatine III, leur préparation et les compositions pharmaceutiques qui les contiennent.
US5472954A (en) 1992-07-14 1995-12-05 Cyclops H.F. Cyclodextrin complexation
US5202448A (en) 1992-08-14 1993-04-13 Napro Biotherapeutics, Inc. Processes of converting taxanes into baccatin III
KR940003548U (ko) 1992-08-14 1994-02-21 김형술 세탁물 건조기
WO1994005282A1 (en) 1992-09-04 1994-03-17 The Scripps Research Institute Water soluble taxol derivatives
US5342621A (en) 1992-09-15 1994-08-30 Advanced Cardiovascular Systems, Inc. Antithrombogenic surface
CA2145093C (en) 1992-09-25 2007-04-10 Lawrence Leroy Kunz Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US5770609A (en) 1993-01-28 1998-06-23 Neorx Corporation Prevention and treatment of cardiovascular pathologies
US6306421B1 (en) 1992-09-25 2001-10-23 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
CA2100808A1 (en) 1992-10-01 1994-04-02 Vittorio Farina Deoxy paclitaxels
FR2696464B1 (fr) 1992-10-05 1994-11-10 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveau procédé d'estérification de la baccatine III et de la désacétyl-10 baccatine III.
FR2696463B1 (fr) 1992-10-05 1994-11-25 Rhone Poulenc Rorer Sa Procédé d'obtention de la désacétyl-10 baccatine III.
FR2696461B1 (fr) 1992-10-05 1994-11-10 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux dérivés d'analogues du taxol, leur préparation et les compositions qui les contiennent.
FR2696462B1 (fr) 1992-10-05 1994-11-25 Rhone Poulenc Rorer Sa Procédé d'obtention de la désacétyl-10 baccatine III.
FR2698543B1 (fr) 1992-12-02 1994-12-30 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouvelles compositions à base de taxoides.
US5380751A (en) 1992-12-04 1995-01-10 Bristol-Myers Squibb Company 6,7-modified paclitaxels
US5342348A (en) 1992-12-04 1994-08-30 Kaplan Aaron V Method and device for treating and enlarging body lumens
US5279949A (en) 1992-12-07 1994-01-18 Board Of Trustees Operating Michigan State University Process for the isolation and purification of taxol and taxanes from Taxus spp
EP0604022A1 (en) 1992-12-22 1994-06-29 Advanced Cardiovascular Systems, Inc. Multilayered biodegradable stent and method for its manufacture
US5419760A (en) * 1993-01-08 1995-05-30 Pdt Systems, Inc. Medicament dispensing stent for prevention of restenosis of a blood vessel
US5981568A (en) 1993-01-28 1999-11-09 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US6491938B2 (en) 1993-05-13 2002-12-10 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US6663881B2 (en) 1993-01-28 2003-12-16 Neorx Corporation Therapeutic inhibitor of vascular smooth muscle cells
US5439686A (en) 1993-02-22 1995-08-08 Vivorx Pharmaceuticals, Inc. Methods for in vivo delivery of substantially water insoluble pharmacologically active agents and compositions useful therefor
US5378456A (en) * 1993-03-25 1995-01-03 American Cyanamid Company Antitumor mitoxantrone polymeric compositions
WO1994024961A1 (en) 1993-04-23 1994-11-10 Schneider (Usa) Inc. Covered stent and stent delivery device
US5464650A (en) 1993-04-26 1995-11-07 Medtronic, Inc. Intravascular stent and method
JPH08510209A (ja) * 1993-05-13 1996-10-29 ネオルックス コーポレイション 血管平滑筋細胞の治療阻害因子
IT1276342B1 (it) 1993-06-04 1997-10-30 Ist Naz Stud Cura Dei Tumori Stent metallico rivestito con materiale polimerico biocompatibile
US5468769A (en) 1993-07-15 1995-11-21 Abbott Laboratories Paclitaxel derivatives
AU728873B2 (en) 1993-07-19 2001-01-18 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Anti-angiogenic compositions and methods of use
AU771815B2 (en) 1993-07-19 2004-04-01 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Anti-angiogenic compositions and methods of use
US5994341A (en) 1993-07-19 1999-11-30 Angiogenesis Technologies, Inc. Anti-angiogenic Compositions and methods for the treatment of arthritis
NZ533467A (en) * 1993-07-19 2006-02-24 Angiotech Pharm Inc Anti-angiogenic compositions and methods of use
US20030203976A1 (en) * 1993-07-19 2003-10-30 William L. Hunter Anti-angiogenic compositions and methods of use
WO1995003795A1 (en) 1993-07-29 1995-02-09 The Government Of The United States Of America, Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Method of treating atherosclerosis or restenosis using microtubule stabilizing agent
US5380299A (en) 1993-08-30 1995-01-10 Med Institute, Inc. Thrombolytic treated intravascular medical device
US5455046A (en) 1993-09-09 1995-10-03 Edward Mendell Co., Inc. Sustained release heterodisperse hydrogel systems for insoluble drugs
US5457113A (en) 1993-10-15 1995-10-10 Eli Lilly And Company Methods for inhibiting vascular smooth muscle cell proliferation and restinosis
US5643575A (en) 1993-10-27 1997-07-01 Enzon, Inc. Non-antigenic branched polymer conjugates
US5415869A (en) 1993-11-12 1995-05-16 The Research Foundation Of State University Of New York Taxol formulation
US5443505A (en) 1993-11-15 1995-08-22 Oculex Pharmaceuticals, Inc. Biocompatible ocular implants
JPH09508892A (ja) 1993-11-17 1997-09-09 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー ヘパリナーゼを用いる血管形成の阻害方法
US5462726A (en) 1993-12-17 1995-10-31 Bristol-Myers Squibb Company Method of inhibiting side effects of solvents containing ricinoleic acid or castor oil or derivatives thereof employing a thromboxane A2 receptor antagonist and pharmaceutical compositions containing such solvents
CA2147813A1 (en) 1994-04-28 1995-10-29 Richard Dixon Intravascular prosthesis with anti-thrombogenic coating
US5626862A (en) 1994-08-02 1997-05-06 Massachusetts Institute Of Technology Controlled local delivery of chemotherapeutic agents for treating solid tumors
US5489589A (en) 1994-12-07 1996-02-06 Bristol-Myers Squibb Company Amino acid derivatives of paclitaxel
US6231600B1 (en) 1995-02-22 2001-05-15 Scimed Life Systems, Inc. Stents with hybrid coating for medical devices
JP3224121B2 (ja) 1995-04-24 2001-10-29 ヤマハ発動機株式会社 自動二輪車用ステアリングヘッド部材
US5801191A (en) 1995-06-01 1998-09-01 Biophysica Foundation Taxoids
US5766584A (en) 1995-06-02 1998-06-16 Massachusetts Institute Of Technology Inhibition of vascular smooth muscle cell proliferation with implanted matrix containing vascular endothelial cells
US6783543B2 (en) * 2000-06-05 2004-08-31 Scimed Life Systems, Inc. Intravascular stent with increasing coating retaining capacity
NZ505584A (en) * 1996-05-24 2002-04-26 Univ British Columbia Delivery of a therapeutic agent to the smooth muscle cells of a body passageway via an adventia
CA2288198A1 (en) 1997-03-25 1998-10-01 Daniel I. Simon Modulation of vascular healing by inhibition of leukocyte adhesion and function
ATE278397T1 (de) 1997-03-31 2004-10-15 Boston Scient Ltd Verwendung von cytoskelettinhibitoren zur vorbeugung der restenose
US6273908B1 (en) * 1997-10-24 2001-08-14 Robert Ndondo-Lay Stents
IL133053A0 (en) 1998-03-23 2001-03-19 Conjuchem Inc Local delivery of long lasting therapeutic agents
US7208010B2 (en) 2000-10-16 2007-04-24 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device for delivery of beneficial agent
US6241762B1 (en) 1998-03-30 2001-06-05 Conor Medsystems, Inc. Expandable medical device with ductile hinges
EP1132058A1 (en) 2000-03-06 2001-09-12 Advanced Laser Applications Holding S.A. Intravascular prothesis
US6395326B1 (en) 2000-05-31 2002-05-28 Advanced Cardiovascular Systems, Inc. Apparatus and method for depositing a coating onto a surface of a prosthesis
AU2002235175A1 (en) 2000-12-06 2002-06-18 Tularik, Inc. Lometrexol combination therapy
JP3502053B2 (ja) 2001-03-15 2004-03-02 パナソニック コミュニケーションズ株式会社 複合機
WO2004001780A2 (en) * 2002-06-20 2003-12-31 Federal-Mogul Powertrain, Inc. Multiple layer insulating sleeve
JP3990961B2 (ja) * 2002-09-09 2007-10-17 株式会社コナミデジタルエンタテインメント ゲーム機およびビンゴゲーム機
US20040127976A1 (en) 2002-09-20 2004-07-01 Conor Medsystems, Inc. Method and apparatus for loading a beneficial agent into an expandable medical device
US20070003636A1 (en) * 2003-01-22 2007-01-04 Francois Mach Statins (HMG-COA reductase inhibitors) as a novel type of immunomodulator, immunosuppressor and anti-inflammatory agent
US20050100577A1 (en) 2003-11-10 2005-05-12 Parker Theodore L. Expandable medical device with beneficial agent matrix formed by a multi solvent system

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
МИРСАМОВ М.М. и др. Дренирование мочевого пузыря методом стентирования. Мед. журнал Узбекистана, 1992, № 4, с. 46-48. ШАФИРОВСКИЙ Б.Б. и др. Восстановление проходимости трахеи и главных бронхов с помощью бифуркационного стента. - Пульмонология, 1992, № 2, с. 60-61. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2467705C1 (ru) * 2011-06-30 2012-11-27 ФЕДЕРАЛЬНОЕ ГОСУДАРСТВЕННОЕ УЧРЕЖДЕНИЕ "РОССИЙСКИЙ НАУЧНЫЙ ЦЕНТР РАДИОЛОГИИ И ХИРУРГИЧЕСКИХ ТЕХНОЛОГИЙ" МИНИСТЕРСТВА ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СОЦИАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ (ФГУ "РНЦРХТ" Минздравсоцразвития России) Способ лечения облитерирующего атеросклероза сосудов нижних конечностей
RU2555378C1 (ru) * 2014-07-10 2015-07-10 Вадим Викторович Евдокимов Способ эндоскопической остановки и профилактики язвенных кровотечений из дефектов стенки 12-перстной кишки

Also Published As

Publication number Publication date
DK1159974T3 (da) 2007-11-26
US20110071612A1 (en) 2011-03-24
CN101007173A (zh) 2007-08-01
ES2106553T5 (es) 2008-02-16
US20080020063A1 (en) 2008-01-24
DE69434856T2 (de) 2007-03-01
US20050208137A1 (en) 2005-09-22
ATE339975T1 (de) 2006-10-15
CN1502331A (zh) 2004-06-09
US20060121117A1 (en) 2006-06-08
DK1155689T3 (da) 2006-11-20
KR20080043375A (ko) 2008-05-16
EP1695697A1 (en) 2006-08-30
JP2007084572A (ja) 2007-04-05
ATE502625T1 (de) 2011-04-15
NZ268326A (en) 1997-12-19
JP4476536B2 (ja) 2010-06-09
EP0706376B1 (en) 1997-06-25
KR20030097620A (ko) 2003-12-31
US20040062810A1 (en) 2004-04-01
CN100998869A (zh) 2007-07-18
NO324275B1 (no) 2007-09-17
US20060127445A1 (en) 2006-06-15
CN1704121A (zh) 2005-12-07
US20070298123A1 (en) 2007-12-27
DK0706376T4 (da) 2007-12-10
JP3423317B2 (ja) 2003-07-07
ATE537858T1 (de) 2012-01-15
DE69434048D1 (de) 2004-11-04
DE69435139D1 (de) 2008-10-23
KR100389223B1 (ko) 2003-10-08
NZ329193A (en) 2001-08-31
RU2007111679A (ru) 2008-10-10
NO960226D0 (no) 1996-01-18
US8221794B2 (en) 2012-07-17
EP0797988A2 (en) 1997-10-01
PT2226085E (pt) 2014-03-04
EP1155690A3 (en) 2001-11-28
EP1159975A3 (en) 2002-03-27
EP1159975B1 (en) 2008-09-10
DK2226085T3 (da) 2014-02-03
EP1155689A2 (en) 2001-11-21
HK1042054A1 (en) 2002-08-02
EP1946749A1 (en) 2008-07-23
EP0706376B2 (en) 2007-08-08
DE69434048T2 (de) 2005-10-06
US20100240742A1 (en) 2010-09-23
US20020164377A1 (en) 2002-11-07
US20090074830A1 (en) 2009-03-19
LU92423I2 (en) 2015-01-20
ATE420628T1 (de) 2009-01-15
ATE407712T1 (de) 2008-09-15
CA2472373C (en) 2009-10-13
US20080166387A1 (en) 2008-07-10
EP1155689A3 (en) 2001-11-28
EP1155689B1 (en) 2006-09-20
DE69403966D1 (de) 1997-07-31
EP1695698B1 (en) 2011-03-23
EP1155691B1 (en) 2008-09-17
DE69435002T2 (de) 2008-03-20
NO20073066L (no) 1996-03-18
NZ511762A (en) 2003-09-26
CN101185759B (zh) 2011-05-25
AU693797B2 (en) 1998-07-09
JP2006328086A (ja) 2006-12-07
CA2468375A1 (en) 1995-02-02
CN101185759A (zh) 2008-05-28
EP0797988A3 (en) 2000-11-22
KR100934111B1 (ko) 2009-12-31
US20100292314A1 (en) 2010-11-18
ATE367173T1 (de) 2007-08-15
EP1632259B1 (en) 2011-12-21
WO1995003036A1 (en) 1995-02-02
CA2167268A1 (en) 1995-02-02
EP1652539B1 (en) 2011-03-23
DE69434856D1 (de) 2006-11-02
ES2321241T3 (es) 2009-06-03
EP1695697A3 (en) 2007-12-26
HK1079715A1 (en) 2006-04-13
PT1159974E (pt) 2007-10-31
KR101222904B1 (ko) 2013-01-17
US20070003630A1 (en) 2007-01-04
US20110066251A1 (en) 2011-03-17
EP1652539A1 (en) 2006-05-03
NZ533467A (en) 2006-02-24
DE69435002D1 (de) 2007-08-30
RU2304433C2 (ru) 2007-08-20
HK1042054B (zh) 2008-11-14
EP1632259A3 (en) 2006-08-09
US20030003094A1 (en) 2003-01-02
EP0706376A1 (en) 1996-04-17
ATE502664T1 (de) 2011-04-15
LU92422I2 (en) 2015-01-20
US20070003629A1 (en) 2007-01-04
ATE277649T1 (de) 2004-10-15
NO960226L (no) 1996-03-18
EP1159974A1 (en) 2001-12-05
EP1159975A2 (en) 2001-12-05
DE69403966T3 (de) 2008-04-17
EP1155691A2 (en) 2001-11-21
CA2472404A1 (en) 1995-02-02
DE69435185D1 (de) 2009-03-05
ATE154757T1 (de) 1997-07-15
DE69435141D1 (de) 2008-10-30
ES2106553T3 (es) 1997-11-01
ATE408429T1 (de) 2008-10-15
KR20110049898A (ko) 2011-05-12
US6544544B2 (en) 2003-04-08
ES2290074T3 (es) 2008-02-16
EP1632259A2 (en) 2006-03-08
US6506411B2 (en) 2003-01-14
CN1130866A (zh) 1996-09-11
US20130102657A1 (en) 2013-04-25
CN1138505C (zh) 2004-02-18
ES2449311T3 (es) 2014-03-19
EP1155690A2 (en) 2001-11-21
EP1695698A1 (en) 2006-08-30
EP2226085B1 (en) 2013-11-27
EP1652539B8 (en) 2011-06-15
JP4920353B2 (ja) 2012-04-18
NZ523799A (en) 2005-03-24
PT1155689E (pt) 2007-01-31
JP4597115B2 (ja) 2010-12-15
RU2001132111A (ru) 2003-07-27
US20020119202A1 (en) 2002-08-29
EP1159974B1 (en) 2007-07-18
DE69435341D1 (de) 2011-05-05
CA2167268C (en) 2004-09-28
CA2472373A1 (en) 1995-02-02
DK0797988T3 (da) 2009-05-11
ES2267638T3 (es) 2007-03-16
EP1155690B1 (en) 2004-09-29
DE69434856T4 (de) 2009-09-24
US20090036517A1 (en) 2009-02-05
DK0706376T5 (da) 2006-05-15
JPH09503488A (ja) 1997-04-08
DK0706376T3 (da) 1997-10-13
DE69435342D1 (de) 2011-05-05
EP1155691A3 (en) 2002-05-29
GR3024833T3 (en) 1998-01-30
CN1704121B (zh) 2010-08-18
JP2002326930A (ja) 2002-11-15
US20060240113A1 (en) 2006-10-26
US7820193B2 (en) 2010-10-26
EP2226085A1 (en) 2010-09-08
CN100998565A (zh) 2007-07-18
AU7119294A (en) 1995-02-20
EP0797988B1 (en) 2009-01-14
US20040076672A1 (en) 2004-04-22
DE69403966T2 (de) 1998-02-05
US20110118825A1 (en) 2011-05-19
PT797988E (pt) 2009-05-19
KR20090090403A (ko) 2009-08-25
US20050123605A1 (en) 2005-06-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2180844C2 (ru) Стент для расширения просвета, расположенного внутри тела канала