ES2582947T3 - Híbridos de monómero-dímero quiméricos de inmunoglobulina - Google Patents

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Robert T. Peters
Adam R Mezo
Daniel S Rivera
Alan J Bitonti
James M Stattel
Susan C Low
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Biogen Hemophilia Inc
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Abstract

Una proteína quimérica para uso en un método de tratamiento con una molécula biológicamente activa y dos regiones constantes de inmunoglobulina o partes de las mismas, en donde la proteína quimérica comprende una primera cadena de polipéptidos y una segunda cadena de polipéptidos, en donde la primera cadena de polipéptidos comprende la molécula biológicamente activa y una región constante de inmunoglobulina o parte de la misma, que es un componente de unión a receptor neonatal (FcRn), y en donde la molécula biológicametne activa es una proteína seleccionada del grupo que consiste en una citocina, una hormona y un factor de coagulación; y en donde la segunda cadena de polipéptidos consiste en una región constante de inmunoglobulina, o una parte de la misma, que es un componente de unión a FcRn y opcionalmente una molécula con un peso molecular no mayor que 2 kD,

Description

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La Figura 3d es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica ligante  de IFN-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado) que es escindido por la célula después de la traducción produciendo ligante  de IFN-Fc maduro.
La Figura 3e es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica Flag-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado), que es escindido por la célula después de la traducción produciendo Flag-Fc madura.
La Figura 3f es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica Epo-CCA-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado), que es escindido por la célula después de la traducción produciendo Epo-CCA-Fc madura. También se muestra en negrita el dominio de superenrollamiento ácido.
La Figura 3g es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica CCB-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado), que es escindido por la célula después de la traducción produciendo CCB-Fc madura. También se muestra en negrita el dominio de superenrollamiento básico.
La Figura 3h es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica Cys-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado), que es escindido por la célula después de la traducción produciendo Cys-Fc madura.
La Figura 3i es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica IFN-GS15-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado) que es escindido por la célula después de la traducción produciendo IFN-GS15-Fc madura.
La Figura 3j es la secuencia de ácidos nucleicos de la proteína quimérica Epo-Fc. En la secuencia se incluye el péptido señal (subrayado), que es escindido por la célula después de la traducción produciendo Epo-Fc madura. También se muestra en negrita una secuencia de ácidos nucleicos que codifica el ligante de 8 aminoácidos.
La Figura 4 demuestra rutas para formar híbridos de monómero-dímero mediante ligación nativa.
La Figura 5a muestra la secuencia de aminoácidos de Fc-MESNA (SEQ ID Nº: 4).
La Figura 5b muestra la secuencia de ADN de Fc-MESNA (SEQ IDSEQ ID Nº: 5).
La Figura 6 compara actividad antiviral de homo-dímero de IFN (es decir, que comprende 2 moléculas de IFN) con un híbrido de monómero-dímero de IFN (es decir, que comprende 1 molécula de IFN).
La Figura 7 es una comparación de actividad de coagulación de un híbrido quimérico de monómero-dímero factor VIIa-Fc (molécula de un factor VII) y un homodímero quimérico factor VIIa-Fc (moléculas de dos factores VII).
La Figura 8 compara la dosificación oral en ratas neonatas de un híbrido quimérico de monómero-dímero factor VIIa-Fc (molécula de un factor VII) y un homodímero quimérico factor VIIa-Fc (moléculas de dos factores VII).
La Figura 9 compara la dosificación oral en ratas neonatas de un híbrido quimérico de monómero-dímero factor IX-Fc (molécula de un factor IX) con un homodímero quimérico.
La Figura 10 es un estudio de transcurso del tiempo que compara un híbrido quimérico de monómero-dímero factor IX-Fc (molécula de un factor IX) administrado por vía oral a ratas neonatas con un homodímero quimérico administrado por vía oral.
La Figura 11 demuestra la farmacocinética del dímero Epo-Fc en comparación con el híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc en monos cinomolgos después de una única dosis pulmonar.
La Figura 12 compara la concentración en suero en monos de híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc subcutáneamente administrado con Aranesp® subcutáneamente administrado (darbepoyetina alfa).
La Figura 13 compara la concentración en suero en monos de híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc intravenosamente administrado con Aranesp® intravenosamente administrado (darbepoyetina alfa) y Epogen® (epoyetina alfa).
La Figura 14 muestra una traza de una columna Mimetic Red 2™ (ProMetic LifeSciences, Inc., Wayne, NJ) y una SDS-PAGE de fracciones de la columna que contienen híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc, dímero de Epo-Fc y Fc. El híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc se encuentra en las fracciones 11, 12, 13 y 14. El dímero de Epo-Fc se encuentra en la fracción 18. Fc se encuentra en las fracciones 1/2.
La Figura 15 muestra la farmacocinética de IFN-Fc con un ligante de 8 aminoácido en monos cinomolgos después de una única dosis pulmonar.
La Figura 16 muestra la estimulación de neopterina en respuesta al homodímero de IFN-Fc y el híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc N297A en monos cinomolgos.
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cascada de reacciones bioquímicas que culmina en la formación de un coágulo de fibrina y/o reduce la gravedad, duración o frecuencia de hemorragia o episodio hemorrágico.
Dímero, como se usa en la presente memoria, se refiere a una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadena de polipéptidos, en la que la primera y segunda cadenas comprenden ambas una molécula biológicamente activa, y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina. Un homodímero se refiere a un dímero en el que ambas moléculas biológicamente activas son las mismas.
Híbrido de monómero-dímero diméricamente ligado se refiere a una proteína quimérica que comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, por ejemplo, un fragmento Fc de una inmunoglobulina, una molécula biológicamente activa y un ligante que liga las dos juntas de forma que una molécula biológicamente activa esté unida a 2 cadenas de polipéptidos, comprendiendo cada una una parte de una región constante de inmunoglobulina. La Figura 4 muestra un ejemplo de un híbrido de monómero-dímero diméricamente ligado.
Construcción de ADN, como se usa en la presente memoria, significa una molécula de ADN, o un clon de una molécula tal, tanto mono como bicatenaria, que ha sido modificada mediante intervención humana para contener segmentos de ADN combinados de un modo que, en conjunto, no existiría de otro modo en la naturaleza. Las construcciones de ADN contienen la información necesaria para dirigir la expresión de polipéptidos de interés. Las construcciones de ADN pueden incluir promotores, potenciadores y terminadores de la transcripción. Las construcciones de ADN que contienen la información necesaria para dirigir la secreción de un polipéptido también contendrán al menos una secuencia señal secretora.
Dominio, como se usa en la presente memoria, significa una región de un polipéptido (incluyendo proteínas como se define ese término) que tienen alguna característica o función física distintiva que incluye, por ejemplo, una estructura independientemente plegada que comprende una sección de una cadena de polipéptidos. Un dominio puede contener la secuencia de la característica física distintiva del polipéptido o puede contener un fragmento de la característica física que retiene sus características de unión (es decir, puede unirse a un segundo dominio). Un dominio puede asociarse a otro dominio. En otras palabras, un primer dominio puede unirse naturalmente a un segundo dominio.
Un fragmento, como se usa en la presente memoria, se refiere a un péptido o polipéptido que comprende una secuencia de aminoácidos de al menos 2 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 5 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 10 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 15 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 20 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 25 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 40 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 50 residuos de aminoácidos contiguos, de al menos 100 residuos de aminoácidos contiguos, o de al menos 200 residuos de aminoácidos contiguos o cualquier deleción o truncación de una proteína, péptido o polipéptido.
La hemostasia, como se usa en la presente memoria, significa la interrupción del sangrado o hemorragia; o la interrupción de la circulación sanguínea a través de un vaso sanguíneo o parte del cuerpo.
Trastorno hemostático, como se usa en la presente memoria, significa una afección genéticamente heredada o adquirida caracterizada por una tendencia a hemorragia, tanto espontáneamente o como resultado de traumatismo, debido a un capacidad alterada o incapacidad para formar un coágulo de fibrina.
Ligada, como se usa en la presente memoria, se refiere a una primera secuencia de ácidos nucleicos covalentemente unida a una segunda secuencia de ácidos nucleicos. La primera secuencia de ácidos nucleicos puede estar directamente unida o yuxtapuesta a la segunda secuencia de ácidos nucleicos o alternativamente una secuencia interviniente puede unir covalentemente la primera secuencia con la segunda secuencia. Ligada como se usa en la presente memoria también puede referirse a una primera secuencia de aminoácidos covalentemente, o no covalentemente, unida a una segunda secuencia de aminoácidos. La primera secuencia de aminoácidos puede unirse directamente o yuxtaponerse a la segunda secuencia de aminoácidos o alternativamente una secuencia interviniente puede unir covalentemente la primera secuencia de aminoácidos con la segunda secuencia de aminoácidos.
Operativamente ligada, como se usa en la presente memoria, significa una primera secuencia de ácidos nucleicos ligada a una segunda secuencia de ácidos nucleicos de forma que ambas secuencias puedan expresarse como una proteína o péptido biológicamente activo.
Polipéptido, como se usa en la presente memoria, se refiere a un polímero de aminoácidos y no se refiere a una longitud específica del producto; así, péptidos, oligopéptidos y proteínas están incluidos dentro de la definición de polipéptido. Este término no excluye modificaciones post-expresión del polipéptido, por ejemplo, glucosilación, acetilación, fosforilación, PEGilación, adición de un resto de lípido, o la adición de cualquier molécula orgánica o inorgánica. Incluidos dentro de la definición están, por ejemplo, polipéptidos que contienen uno o más análogos de un aminoácido (incluyendo, por ejemplo, aminoácidos no naturales) y polipéptidos con enlaces sustituidos, además de otras modificaciones conocidas en la técnica, tanto que se producen naturalmente como que no se producen naturalmente.
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Alta rigurosidad, como se usa en la presente memoria, incluye condiciones fácilmente determinadas por el experto basadas en, por ejemplo, la longitud del ADN. Generalmente, tales condiciones se definen en Sambrook y col. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2ª ed. vol. 1, pág. 1.101-104, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), e incluyen uso de una disolución de prelavado para los filtros de nitrocelulosa 5X SSC, 0,5% de SDS, EDTA 1,0 mM (pH 8,0), condiciones de hibridación de 50% de formamida, 6X SSC a 42 ºC (u otra disolución de hibridación similar, tal como disolución de Stark, en 50% de formamida a 42 ºC, y con lavado a aproximadamente 68 ºC, 0,2X SSC, 0,1% de SDS). El experto reconocerá que la temperatura y la concentración de sales de la disolución de lavado pueden ajustarse según sea necesario según factores tales como la longitud de la sonda.
Rigurosidad moderada, como se usa en la presente memoria, incluye condiciones que pueden determinarse fácilmente por aquellos expertos habituales en la materia basándose en, por ejemplo, la longitud del ADN. Las condiciones básicas se exponen por Sambrook y col. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2ª ed. vol. 1, pág. 1.101-104, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989), e incluyen uso de una disolución de prelavado para los filtros de nitrocelulosa 5X SSC, 0,5% de SDS, EDTA 1,0 mM (pH 8,0), condiciones de hibridación de 50% de formamida, 6X SSC a 42 ºC (u otra disolución de hibridación similar, tal como disolución de Stark, en 50% de formamida a 42 ºC), y condiciones de lavado de 60 ºC, 0,5X SSC, 0,1% de SDS.
Una molécula inorgánica pequeña, como se usa en la presente memoria, significa una molécula que no contiene átomos de carbono y que no tiene más de 50 kD.
Una molécula orgánica pequeña, como se usa en la presente memoria, significa una molécula que contiene al menos un átomo de carbono y que no tiene más de 50 kD.
Tratar, tratamiento, tratando, como se usa en la presente memoria, significa cualquiera de lo siguiente: la reducción en la gravedad de una enfermedad o afección; la reducción en la duración de un transcurso de enfermedad; la mejora de uno o más síntomas asociados a una enfermedad o afección; la provisión de efectos beneficiosos a un sujeto con una enfermedad o afección, sin curar necesariamente la enfermedad o afección, la profilaxis de uno o más síntomas asociados a una enfermedad o afección.
B. Mejoras ofrecidas por ciertas realizaciones de la invención
La presente descripción proporciona proteínas quiméricas (híbridos de monómero-dímero) que comprenden una primera y una segunda cadena de polipéptidos, en las que dicha primera cadena comprende una molécula biológicamente activa y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, y dicha segunda cadena comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina sin ninguna molécula biológicamente activa o región variable de una inmunoglobulina. La Figura 1 compara dímeros de proteína de fusión tradicionales con un ejemplo del híbrido de monómero-dímero de la presente descripción (cuyo ejemlo es, además, una realziación de la presente invención). En este ejemplo, la molécula biológicamente activa es EPO y la parte de una inmunoglobulina es la región Fc de IgG.
Al igual que otras proteínas quiméricas que comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, la presente descripción, que incluye la presente invención, proporciona proteínas quiméricas que proporcionan estabilidad potenciada y elevada biodisponibilidad de la proteína quimérica en comparación con la molécula biológicamente activa sola. Adicionalmente, sin embargo, debido a que solo una de las dos cadenas comprende la molécula biológicamente activa, la proteína quimérica tiene un menor peso molecular que una proteína quimérica en la que todas las cadenas comprenden una molécula biológicamente activa y, aunque no se desee quedar ligado a teoría particular, esto puede hacer que la proteína quimérica sea más fácilmente transcitada a través de la barrera del epitelio, por ejemplo, uniéndose al receptor FcRn, aumentando así la semivida de la proteína quimérica. En un caso, la presente descripción proporciona así un procedimiento no invasivo mejorado (por ejemplo, mediante cualquier superficie de la mucosa tal como por vía oral, bucalmente, sublingualmente, nasalmente, rectalmente, vaginalmente, o mediante vía pulmonar u ocular) de administrar una proteína quimérica terapéutica de la presente descripción, por ejemplo, una proteína quimérica de la presente invención. Así, la presente descripción proporciona procedimientos de obtención de niveles terapéuticos de las proteínas quiméricas de la presente descripción, por ejemplo, de las proteínas quiméricas de la presente invención, usando dosis menos frecuentes y menores en comparación con proteínas quiméricas previamente descritas (por ejemplo, proteínas quiméricas que comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y una molécula biológicamente activa, en la que todas las cadenas de la proteína quimérica comprenden una molécula biológicamente activa).
En otro caso, la presente descripción proporciona un procedimiento invasivo, por ejemplo, subcutáneamente, intravenosamente, de administración de una proteína quimérica terapéutica de la presente descripción, por ejemplo, una proteína quimérica terapéutica de la presente invención. La administración invasiva de la proteína quimérica terapéutica de la presente descripción, por ejemplo, de la proteína quimérica terapéutica de la presente invención. proporciona una elevada semivida de la proteína quimérica terapéutica que se produce usando dosis menos frecuentes y menores en comparación con proteínas quiméricas previamente descritas (por ejemplo, proteínas quiméricas que comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y una molécula biológicamente activa, en la que todas las cadenas de la proteína quimérica comprenden una molécula biológicamente activa).
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Todavía otra ventaja de una proteína quimérica en la que solo una de las cadenas comprende una molécula biológicamente activa es la accesibilidad potenciada de la molécula biológicamente activa para su célula diana o molécula resultante de impedimento estérico disminuido, interacciones hidrófobas disminuidas, interacciones iónicas disminuidas o peso molecular disminuido en comparación con una proteína quimérica en la que todas las cadenas comprenden una molécula biológicamente activa.
C. Proteínas quiméricas
La presente descripción se refiere a proteínas quiméricas que comprenden una molécula biológicamente activa, al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y opcionalmente al menos un ligante. La parte de una inmunoglobulina tendrá tanto un extremo N, o amino, como un extremo C, o carboxi. La proteína quimérica puede tener la molécula biológicamente activa ligada al extremo N de la parte de una inmunoglobulina. Alternativamente, la molécula biológicamente activa puede ligarse al extremo C de la parte de una inmunoglobulina. En un caso, el enlace es un enlace covalente. En otra realización, el enlace es un enlace no covalente.
La proteína quimérica puede comprender opcionalmente al menos un ligante; así, la molécula biológicamente activa no tiene que estar directamente ligada a la parte de una región constante de inmunoglobulina. El ligante puede intervenir entre la molécula biológicamente activa y la parte de una región constante de inmunoglobulina. El ligante puede ligarse al extremo N de la parte de una región constante de inmunoglobulina, o al extremo C de la parte de una región constante de inmunoglobulina. Si la molécula biológicamente activa comprende al menos un aminoácido, la molécula biológicamente activa tendrá un extremo N y un extremo C y el ligante puede ligarse al extremo N de la molécula biológicamente activa, o al extremo C de la molécula biológicamente activa.
La presente descripción se refiere a una proteína quimérica de fórmula X-La-F:F o F:F-La-X en las que X es una molécula biológicamente activa, L es un ligante opcional, F es al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y a es cualquier número entero o cero. La presente descripción también se refiere a una proteína quimérica de fórmula Ta-X-La-F:F o Ta-F:F-La-X en las que X es una molécula biológicamente activa, L es un ligante opcional, F es al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, a es cualquier número entero o cero, T es un segundo ligante o alternativamente una marca que puede usarse para facilitar la purificación de la proteína quimérica, por ejemplo, una marca FLAG, una marca de histidina, una marca GST, una marca de proteína de unión a maltosa y (:) representa una asociación química, por ejemplo, al menos un enlace no peptídico. En ciertos casos, la asociación química, es decir, (:) es un enlace covalente. En otras casos, la asociación química, es decir, (:) es una interacción no covalente, por ejemplo, una interacción iónica, una interacción hidrófoba, una interacción hidrófila, una interacción de Van der Waals, un enlace de hidrógeno. Se entenderá por el experto que cuando a es igual a cero X se ligará directamente a F. Así, por ejemplo, a puede ser 0, 1, 2, 3, 4, 5, o superior a 5.
En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2a (SEQ IDSEQ ID Nº: 6). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2b (SEQ IDSEQ ID Nº: 8). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2c (SEQ IDSEQ ID Nº: 10). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2d (SEQ IDSEQ ID Nº: 12). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2e (SEQ IDSEQ ID Nº: 14). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2f (SEQ IDSEQ ID Nº: 16). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2g (SEQ IDSEQ ID Nº: 18). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2h (SEQ IDSEQ ID Nº: 20). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2i (SEQ IDSEQ ID Nº: 22). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 2j (SEQ IDSEQ ID Nº: 24). En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende la secuencia de aminoácidos de la Figura 17b (SEQ IDSEQ ID Nº: 27).
Basado en la descripción que se ha proporcionado anteriormente, y en la descipción contenida en cualquier otro sitio de la presente memoria, la presente invención proporciona proteínas quiméricas ddentro del alcance de la reivindicación 1 del apéndice.
1. Variantes de proteínas quiméricas
Derivados de las proteínas quiméricas de la presente descripción, que incluyen las proteínas quiméricas de la presente invención, anticuerpos contra tales proteínas quiméricas y anticuerpos contra componentes de unión de tales proteínas quiméricas, son todos contemplados, y pueden prepararse alterando sus secuencias de aminoácidos por sustituciones, adiciones y/o deleciones/truncaciones o introduciendo modificación química que produce moléculas funcionalmente equivalentes. Se entenderá por un experto habitual en la materia que ciertos aminoácidos en una secuencia de cualquier proteína pueden estar sustituidos por otros aminoácidos sin afectar adversamente la actividad de la proteína.
Pueden hacerse diversos cambios en las secuencias de aminoácidos de las proteínas quiméricas de la presente descripción, por ejemplo, de las proteínas quiméricas de la presente invención, o en secuencias de ADN que las
codifican sin pérdida apreciable de su actividad, función o utilidad biológica. Derivados, análogos o mutantes resultantes de tales cambios y el uso de tales derivados están dentro del alcance de la presente descripción. En un caso específico, el derivado es funcionalmente activo, es decir, puede presentar una o más actividades asociadas a las proteínas quiméricas de la presente descripción, por ejemplo, de las proteínas quiméricas de la invención, por 5 ejemplo, unión a FcRn, inhibición viral, hemostasia, producción de glóbulos rojos. Muchos ensayos que pueden probar la actividad de una proteína quimérica que comprende una molécula biológicamente activa se conocen en la técnica. Si la molécula biológicamente activa es un inhibidor del VIH, la actividad puede probarse midiendo la actividad de transcriptasa inversa usando procedimientos conocidos (véase, por ejemplo, Barre-Sinoussi y col. 1983, Science 220:868; Gallo y col. 1984, Science 224:500). Alternativamente, la actividad puede medirse midiendo la
10 actividad fusogénica (véase, por ejemplo, Nussbaum y col. 1994, J. Virol. 68(9):5411). Si la actividad biológica es hemostasia, puede realizarse un ensayo de FVlla-rTF StaCLot para evaluar la actividad de derivados del factor VIIa (Johannessen y col. 2000, Blood Coagulation and Fibrinolysis 11:S159).
Sustitutos de un aminoácido dentro de la secuencia pueden seleccionarse de otros miembros de la clase a la que el aminoácido pertenece (véase la Tabla 1). Además, diversos aminoácidos están comúnmente sustituidos con
15 aminoácidos neutros, por ejemplo, alanina, leucina, isoleucina, valina, prolina, fenilalanina, triptófano y metionina (véase, por ejemplo, MacLennan y col. 1998, Acta Physiol. Scand. Suppl. 643:55-67; Sasaki y col. 1998, Adv. Biophys. 35:1-24).
TABLA 1
Residuos originales
Sustituciones a modo de ejemplo Sustituciones típicas
Ala (A)
Val, Leu, IIe Val
Arg (R)
Lys, Gln, Asn Lys
Asn (N)
Gin Gln
Asp (D)
Glu Glu
Cys (C)
Ser, Ala Ser
Gln (Q)
Asn Asn
Gly (G)
Pro, Ala Ala
His (H)
Asn, Gln, Lys, Arg Arg
Ile (I)
Leu, Val, Met, Ala, Phe, Norleucina Leu
Leu (L)
Norleucina, Ile, Val, Met, Ala, Phe Ile
Lys (K)
Arg, ácido 1,4-diamino-butírico, Gin, Asn Arg
Met (M)
Leu, Phe, Ile Leu
Phe (F)
Leu, Val, Ile, Ala, Tyr Leu
Pro (P)
Ala Gly
Ser (S)
Thr, Ala, Cys Thr
Thr (T)
Ser Ser
Trp (W)
Tyr, Phe Tyr
Tyr (Y)
Trp, Phe, Thr, Ser Phe
Val (V)
Ile, Met, Leu, Phe, Ala, Norleucina Leu
20 2. Moléculas biológicamente activas
En las realizaciones de la presente invención, la molécula biológicamente activa es una proteína seleccionada del grupo que consiste en una citosina, una hormona y un factor de coagulación (ejemplos de lis cuales se proporcionan en la siguiente descripción). Sin embargo, la presente descripción contempla más generalmente el uso de cualquier molécula biológicamente activa como la molécula terapéutica de la presente descripción. La molécula
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del mismo, o hélice 5 (Root y col. 2001, Science 291:884) o un análogo del mismo.
Pueden usarse ensayos conocidos en la técnica para probar la actividad inhibidora de la fusión viral de un polipéptido, una molécula orgánica pequeña o una molécula inorgánica pequeña. Estos ensayos incluyen un ensayo con transcriptasa inversa, un ensayo con p24, o ensayo de formación de sincitios (véase, por ejemplo, la patente de EE.UU. 5.464.933).
Previamente se ha descrito una lista de agentes antivirales que pueden usarse en la proteína quimérica de la presente descripción (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 6.086.875, 6.485.726, 6.030.613; documentos WO 03/077834; US2003-0235536A1).
c. Agentes hemostáticos
En un caso, la molécula biológicamente activa es un factor de coagulación u otro agente que promueve la hemostasia, que incluye fragmentos y análogos del mismo. El factor de coagulación puede incluir cualquier molécula que tenga actividad de coagulación o active una molécula con actividad de coagulación. El factor de coagulación puede comprender un polipéptido. El factor de coagulación puede ser, como un ejemplo, pero no se limita a, factor VIII, factor IX, factor XI, factor XII, fibrinógeno, protrombina, factor V, factor VII, factor X, factor XIII o factor de von Willebrand. En un caso, el factor de coagulación es factor VII o factor VIIa. El factor de coagulación puede ser un factor que participe en la ruta extrínseca. El factor de coagulación puede ser un factor que participe en la ruta intrínseca. Alternativamente, el factor de coagulación puede ser un factor que participe en tanto la ruta extrínseca como intrínseca.
El factor de coagulación puede ser un factor de coagulación humano o un factor de coagulación no humano, por ejemplo, derivado de un primate no humano, un cerdo o cualquier mamífero. El factor de coagulación puede ser factor de coagulación quimérico, por ejemplo, el factor de coagulación puede comprender una parte de un factor de coagulación humano y una parte de un factor de coagulación porcino, o una parte de un primer factor de coagulación no humano y una parte de un segundo factor de coagulación no humano.
El factor de coagulación puede ser un factor de coagulación activado. Alternativamente, el factor de coagulación puede ser una forma inactiva de un factor de coagulación, por ejemplo, un zimógeno. El factor de coagulación inactivo puede experimentar activación posterior a ser ligado a al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina. El factor de coagulación inactivo puede activarse posterior a la administración a un sujeto. Alternativamente, el factor de coagulación inactivo puede activarse antes de la administración.
En ciertos casos, una endopeptidasa, por ejemplo, enzima escisora de aminoácidos básicos apareados (PACE), o cualquier miembro de la familia PACE, tal como PCSK1-9, que incluye versiones truncadas de la misma, o su equivalente de levadura Kex2 de S. cerevisiae y versiones truncadas de Kex2 (Kex2 1-675) (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 5.077.204; 5.162.220; 5.234.830; 5.885.821; 6.329.176) pueden usarse para escindir un propéptido para formar la proteína quimérica madura de la presente descripción (por ejemplo factor VII, factor IX).
d. Otras moléculas biológicamente activas proteináceas
En un caso de la presente descripción, la molécula biológicamente activa es un receptor o un fragmento o análogo del mismo. El receptor puede expresarse sobre una superficie celular, o alternativamente el receptor puede expresarse sobre el interior de la célula. El receptor puede ser un receptor viral, por ejemplo, CD4, CCR5, CXCR4, CD21, CD46. La molécula biológicamente activa puede ser un receptor bacteriano. La molécula biológicamente activa puede ser una proteína de la matriz extracelular o fragmento o análogo de la misma, importante en la colonización e infección bacteriana (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 5.648.240; 5.189.015; 5.175.096)
o una proteína de la superficie bacteriana importante en adhesión e infección (véase, por ejemplo, la patente de EE.UU. 5.648.240). La molécula biológicamente activa puede ser un factor de crecimiento, hormona o receptor de citocina, o un fragmento o análogo del mismo, por ejemplo, receptor de TNF, el receptor de eritropoyetina, CD25, CD 122 o CD132.
Previamente se ha descrito una lista de otras moléculas proteináceas que pueden usarse en la proteína quimérica de la presente descripción (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 6.086.875; 6.485.726; 6.030.613; documentos WO 03/077834; US2003-0235536A1).
e. Ácidos nucleicos
En un caso, la molécula biológicamente activa es un ácido nucleico, por ejemplo, ADN, ARN. En un caso específico, la molécula biológicamente activa es un ácido nucleico que puede usarse en ARN interferente (ARNi). La molécula de ácido nucleico puede ser como ejemplo, pero no como limitación, una molécula antisentido o una ribozima o un aptámero.
Las moléculas de ARN y ADN antisentido actúan directamente bloqueando la traducción de ARNm hibridándose con ARNm elegido como diana y previniendo la traducción de proteínas. Enfoques antisentido implican el diseño de oligonucleótidos que son complementarios a una ARNm de gen diana. Los oligonucleótidos antisentido se unirán a
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los transcritos de ARNm del gen diana complementario y prevendrán la traducción. No se requiere complementariedad absoluta.
Una secuencia “complementaria” a una parte de un ARN, como se denomina en la presente memoria, significa una secuencia que tiene suficiente complementariedad para poder hibridarse con el ARN, formando un dúplex estable; en el caso de ácidos nucleicos antisentido bicatenarios, una hebra sencilla del ADN dúplex puede así probarse, o puede ensayarse la formación de tríplex. La capacidad para hibridarse dependerá de tanto el grado de complementaridad como de la longitud del ácido nucleico antisentido. Generalmente, cuanto más largo sea el ácido nucleico de hibridación, más desapareamientos de bases con un ARN puede contener y todavía formar un dúplex estable (o tríplex, según lo requiera el caso). Un experto en la materia puede determinar un grado tolerable de desapareamiento usando procedimientos convencionales para determinar el punto de fusión del complejo hibridado.
Los ácidos nucleicos antisentido deben tener al menos seis nucleótidos de longitud, y son preferentemente oligonucleótidos que oscilan de 6 a aproximadamente 50 nucleótidos de longitud. En aspectos específicos, el oligonucleótido tiene al menos 10 nucleótidos, al menos 17 nucleótidos, al menos 25 nucleótidos o al menos 50 nucleótidos.
Los oligonucleótidos pueden ser ADN o ARN, o mezclas quiméricas o derivados o versiones modificadas de los mismos, monocatenarios o bicatenarios. El oligonucleótido puede modificarse en el resto de base, el resto de azúcar
o esqueleto de fosfato, por ejemplo, para mejorar la estabilidad de la molécula, hibridación, etc. El oligonucleótido puede incluir otros grupos adjuntos tales como polipéptidos (por ejemplo, para elegir como diana receptores de células huésped que eligen diana in vivo), o agentes que facilitan el transporte a través de la membrana celular (véase, por ejemplo, Letsinger y col. 1989, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:6553; Lemaitre y col. 1987, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84:648; documento WO 88/09810) o la barrera hematoencefálica (véase, por ejemplo, el documento WO 89/10134), agentes de escisión provocada por la hibridación (véase, por ejemplo, Krol y col. 1988, BioTechniques 6:958) o agentes intercalantes (véase, por ejemplo, Zon 1988, Pharm. Res. 5:539). Para este fin, el oligonucleótido puede conjugarse con otra molécula, por ejemplo, un polipéptido, agente de reticulación provocada por la hibridación, agente de transporte, o agentes de escisión provocada por la hibridación.
También pueden usarse moléculas de ribozima diseñadas para escindir catalíticamente transcritos de ARNm de gen diana para prevenir la traducción de mARN de gen diana y, por tanto, la expresión de producto génico diana (véase, por ejemplo, el documento WO 90/11364; Sarver y col. 1990, Science 247, 1222-1225).
Las ribozimas son moléculas de ARN enzimáticas que pueden catalizar la escisión específica de ARN (véase Rossi 1994, Current Biology 4:469). El mecanismo de acción de las ribozimas implica hibridación específica de secuencias de la molécula de ribozima con ARN diana complementario, seguido de un evento de escisión endonucleolítica. La composición de moléculas de ribozima debe incluir una o más secuencias complementarias al ARNm de gen diana, y debe incluir la muy conocida secuencia catalítica responsable de la escisión de ARNm. Para esta secuencia, véase, por ejemplo, la patente de EE.UU. 5.093.246.
En un caso, las ribozimas que escinden ARNm en secuencias de reconocimiento específicas para sitio pueden usarse para destruir ARNm de gen diana. En otro caso se contempla el uso de ribozimas en cabeza de martillo. La ribozima en cabeza de martillo escinde ARNm en localizaciones dictadas por regiones flanqueantes que forman pares de bases complementarias con el ARNm diana. El único requisito es que el ARNm tenga la siguiente secuencia de dos bases: 5'-UG-3'. La construcción y producción de ribozimas en cabeza de martillo es muy conocida en la técnica y se describe más completamente en Myers 1995, Molecular Biology and Biotechnology: A Comprehensive Desk Reference, VGH Publishers, Nueva York, y en Haseloff y Gerlach 1988, Nature, 334:585.
f. Moléculas pequeñas
La presente descripción también contempla el uso de cualquier molécula pequeña terapéutica o fármaco como molécula biológicamente activa en la proteína quimérica de la presente descripción. Previamente se ha descrito una lista de moléculas pequeñas y fármacos que pueden usarse en la proteína quimérica de la presente descripción (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 6.086.875; 6.485.726; 6.030.613; documentos WO 03/077834; US2003-0235536A1).
2. Inmunoglobulinas
Las proteínas quiméricas de la presente descripción comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina. Las inmunoglobulinas comprenden cuatro cadenas de proteínas que se asocian covalentemente dos cadenas pesadas y dos cadenas ligeras. Cada cadena comprende adicionalmente una región variable y una región constante. Dependiendo del isotipo de inmunoglobulina, la región constante de la cadena pesada comprende 3 ó 4 dominios de la región constante (por ejemplo, CH1, CH2, CH3, CH4). Algunos isotipos comprenden adicionalmente una región bisagra.
La parte de una región constante de inmunoglobulina puede obtenerse de cualquier mamífero. La parte de una región constante de inmunoglobulina puede incluir una parte de una región constante de inmunoglobulina humana, una región constante de inmunoglobulina de primate no humano, una región constante de inmunoglobulina bovina,
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una región constante de inmunoglobulina porcina, una región constante de inmunoglobulina murina, una región constante de inmunoglobulina ovina o una región constante de inmunoglobulina de rata.
La parte de una región constante de inmunoglobulina puede producirse recombinantemente o sintéticamente. La inmunoglobulina puede aislarse de una biblioteca de ADNc. La parte de una región constante de inmunoglobulina puede aislarse de una biblioteca de fagos (véase, por ejemplo, McCafferty y col. 1990, Nature 348:552, Kang y col. 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:4363; documento EP 0 589 877 B1). La parte de una región constante de inmunoglobulina puede obtenerse por barajado de genes de secuencias conocidas (Mark y col. 1992, Bio/Technol. 10:779). La parte de una región constante de inmunoglobulina puede aislarse por recombinación in vivo (Waterhouse y col. 1993, Nucl. Acid Res. 21:2265). La inmunoglobulina puede ser una inmunoglobulina humanizada (patente de EE.UU. 5.585.089, Jones y col. 1986, Nature 332:323).
La parte de una región constante de inmunoglobulina puede incluir una parte de una IgG, una IgA, una IgM, una IgD
o una IgE. En un caso, la inmunoglobulina es una IgG. En otro caso, la inmunoglobulina es IgG1. En otro caso, la inmunoglobulina es IgG2.
La parte de una región constante de inmunoglobulina puede incluir la región constante de la cadena pesada entera,
o un fragmento o análogo de la misma. En un caso, una región constante de la cadena pesada puede comprender un dominio CH1, un dominio CH2, un dominio CH3 y/o una región bisagra. En otro caso, una región constante de la cadena pesada puede comprender un dominio CH1, un dominio CH2, un dominio CH3 y/o un dominio CH4.
La parte de una región constante de inmunoglobulina puede incluir un fragmento Fc. Un fragmento Fc puede comprender los dominios CH2 y CH3 de una inmunoglobulina y la región bisagra de la inmunoglobulina. El fragmento Fc puede ser el fragmento Fc de una IgG1, una IgG2, una IgG3 o una IgG4. En un caso específico, la parte de una región constante de inmunoglobulina es un fragmento Fc de una IgG1. En otro caso, la parte de una región constante de inmunoglobulina es un fragmento Fc de una IgG2.
Como se ha discutido en cualquier parte en la presente memoria, las proteínas quiméricas de la presente invención comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina que es un componente de unión a receptor neonatal de Fc (FcRn). Esto refleja otro caso de la presente descripción, en el que la parte de una región constante de inmunoglobulina es un componente de unión a FcRn. Un componente de unión a FcRn es cualquier molécula que pueda unirse específicamente por el receptor FcRn con posterior transporte activo por el receptor FcRn del componente de unión a FcRn. Específicamente unido se refiere a dos moléculas que forman un complejo que es relativamente estable bajo condiciones fisiológicas. La unión específica se caracteriza por una alta afinidad y una capacidad de baja a moderada como se distingue de la unión no específica que normalmente tiene una baja afinidad con una capacidad de moderada a alta. Normalmente, la unión se considera específica si la constante de
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afinidad KA es superior a 106 M-1, o más preferentemente superior a 108 . Si fuera necesario, la unión no específica puede reducirse sin afectar sustancialmente la unión específica variando las condiciones de unión. Las condiciones de unión apropiadas tales como concentración de las moléculas, fuerza iónica de la disolución, temperatura, tiempo permitido para la unión, concentración de un agente de bloqueo (por ejemplo, albúmina de suero, caseína de la leche), etc., pueden optimizarse por un experto usando técnicas rutinarias.
El receptor FcRn ha sido aislado de varias especies de mamífero que incluyen seres humanos. Se conocen secuencias de FcRn humano, FcRn de mono, FcRn de rata y FcRn de ratón (Story y col. 1994, J. Exp. Med. 180:2377). El receptor FcRn se une a IgG (pero no a otras clases de inmunoglobulina tales como IgA, IgM, IgD y IgE) a pH relativamente bajo, transporta activamente la IgG transcelularmente en una dirección de luminal a serosal y luego libera la IgG a pH relativamente mayor encontrado en los fluidos intersticiales. Se expresa en tejido epitelial adulto (patentes de EE.UU. 6.485.726, 6.030.613, 6.086.875; documentos WO 03/077834; US2003-0235536A1) que incluye epitelio de pulmón e intestinal (Israel y col. 1997, Immunology 92:69), epitelio tubular proximal renal (Kobayashi y col. 2002, Am. J. Physiol. Renal Physiol. 282:F358), además de epitelio nasal, superficies vaginales y superficies de las vías biliares.
Los componentes de unión a FcRn para su uso según la presente descripción, que incluyen la presente invención, engloban cualquier molécula que pueda unirse específicamente por el receptor FcRn que incluye IgG completa, el fragmento Fc de IgG, y otros fragmentos que incluyen la región de unión completa del receptor FcRn. La región de la parte Fc de IgG que se une al receptor FcRn se ha descrito basándose en cristalografía de rayos X (Burmeister y col. 1994, Nature 372:379). La mayor área de contacto de Fc con el FcRn está cerca de la intersección de los dominios CH2 y CH3. Los contactos Fc-FcRn están todos dentro de una única cadena pesada de Ig. Los componentes de unión a FcRn incluyen IgG completas, el fragmento Fc de IgG y otros fragmentos de IgG que incluyen la región de unión completa de FcRn. Los principales sitios de contacto incluyen los residuos de aminoácidos 248, 250-257, 272, 285, 288, 290-291, 308-311 y 314 del dominio CH2 y residuos de aminoácidos 385387, 428 y 433-436 del dominio CH3. Referencias hechas a la numeración de aminoácidos de inmunoglobulinas o fragmentos de inmunoglobulinas, o regiones, se basan todos en Kabat y col. 1991, Sequences of Proteins of Immunoloical Interest, U.S. Department of Public Health, Bethesda, MD.
La región Fc de IgG puede modificarse según procedimientos bien reconocidos tales como mutagénesis dirigida a sitio y similares dando los fragmentos de IgG o Fc modificados o partes de los mismos que se unirán por FcRn.
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ejemplo, McCafferty y col. 1990, Nature 348:552, Kang y col. 1991, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88:4363; documento EP 0 589 877 B1).
3. Ligantes opcionales
La proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención, puede comprender opcionalmente al menos una molécula de ligante. El ligante puede comprender cualquier molécula orgánica. En un caso de la presente descripción, por ejemplo, en una realización de la presente invención, el ligante es polietilenglicol (PEG). En otro caso, por ejemplo, en otra realización, el ligante comprende aminoácidos. El ligante puede comprender 1-5 aminoácidos, 1-10 aminoácidos, 1-20 aminoácidos, 10-50 aminoácidos, 50-100 aminoácidos, 100-200 aminoácidos. En un caso, por ejemplo, en una realización, el ligante es el ligante de ocho aminoácidos EFAGAAAV (SEQ ID Nº: 31). Cualquiera de los ligantes descritos en la presente memoria puede usarse en la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, en las proteínas quiméricas de la presente invención, por ejemplo, un híbrido de monómero-dímero, que incluye EFAGAAAV, independientemente de la molécula biológicamente activa (por ejemplo, EPO, IFN, factor IX).
El ligante puede comprender la secuencia Gn. El ligante puede comprender la secuencia (GA)n (SEQ ID Nº: 32). El ligante puede comprender la secuencia (GGS)n (SEQ ID Nº: 33). El ligante puede comprender la secuencia (GGS)n(GGGGS)n (SEQ ID Nº: 34). En estos casos, n puede ser un número entero de 1-10, es decir, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10. Ejemplos de ligantes incluyen, pero no se limitan a, GGG (SEQ ID Nº: 35), SGGSGGS (SEQ ID Nº: 36), GGSGGSGGSGGSGGG (SEQ ID Nº: 37), GGSGGSGGGGSGGGGS (SEQ ID Nº: 38), GGSGGSGGSGGSGGSGGS (SEQ ID Nº: 39). El ligante no elimina o disminuye la actividad biológica de la proteína quimérica. Opcionalmente, el ligante potencia la actividad biológica de la proteína quimérica, por ejemplo, disminuyendo más los efectos de impedimento estérico y haciendo la molécula biológicamente activa más accesible a su sitio de unión diana.
En un caso específico de la presente descripción, por ejemplo en una realización específica de la presente invención, el ligante para interferón  tiene 15-25 aminoácidos de longitud. En otro caso específico / en otra realización específica, el ligante para interferón  tiene 15-20 aminoácidos de longitud. En otro caso específico / en otra realización específica, el ligante para interferón  tiene 10-25 aminoácidos de longitud. En otro caso específico / en otra realización específica, el ligante para interferón  tiene 15 aminoácidos de longitud. En un caso / en una realización, el ligante para interferón  es (GGGGS)n (SEQ ID Nº: 40) en la que G representa glicina, S representa serina y n es un número entero de 1-10. En un caso específico / en una realización específica, n es 3.
El ligante también puede incorporar un resto que puede escindirse tanto químicamente (por ejemplo, hidrólisis de un éster enlace), enzimáticamente (es decir, incorporación de una secuencia de escisión de proteasa) como fotolíticamente (por ejemplo, un cromóforo tal como ácido 3-amino-3-(2-nitrofenil)propiónico (ANP)) con el fin de liberar la molécula biológicamente activa de la proteína Fc.
4. Dimerización de proteínas quiméricas usando componentes de unión específicos
En un caso, la proteína quimérica de la presente descripción comprende una primera cadena de polipéptidos que comprende al menos un primer dominio, teniendo dicho primer dominio al menos un componente de unión específico, y una segunda cadena de polipéptidos que comprende al menos un segundo dominio, en la que dicho segundo dominio es un componente de unión específico de dicho primer dominio. Así, la proteína quimérica comprende un polipéptido que puede dimerizarse con otro polipéptido debido a la interacción del primer dominio y el segundo dominio. Los procedimientos de dimerización de anticuerpos usando dominios heterólogos se conocen en la técnica (patentes de EE.UU.: 6.807.706 y 5.910.573; Kostelny y col. 1992, J. Immunol. 148(5):1547).
La dimerización puede producirse por formación de un enlace covalente, o alternativamente un enlace no covalente, por ejemplo, interacción hidrófoba, fuerzas de van der Waals, interdigitación de péptidos anfífilos tales como, pero no se limitan a, hélices alfa, interacciones carga-carga de aminoácidos que llevan cargas opuestas tales como, pero no se limitan a, lisina y ácido aspártico, arginina y ácido glutámico. En un caso, el dominio es un haz de hélices que comprende una hélice, un giro y otra hélice. En otro caso, el dominio es una cremallera de leucina que comprende un péptido que tiene varios aminoácidos de repetición en los que cada séptimo aminoácido es un residuo de leucina. En un caso, los componentes de unión específicos son fos/jun (véase Branden y col. 1991, Introduction To Protein Structure, Garland Publishing, Nueva York).
En otro caso, la unión está mediada por un enlace químico (véase, por ejemplo, Brennan y col. 1985, Science 229:81). En este caso, inmunoglobulinas intactas, o proteínas quiméricas que comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, se escinden para generar fragmentos de la cadena pesada. Estos fragmentos se reducen en presencia del agente complejante de ditiol arsenito de sodio para estabilizar ditioles vecinos y prevenir la formación de disulfuro intermolecular. Los fragmentos generados se convierten entonces en derivados de tionitrobenzoato (TNB). Uno de los derivados de TNB se reconvierte entonces en el fragmento de la cadena pesada tiol mediante reducción con mercaptoetilamina y entonces se mezcla con una cantidad equimolar del otro derivado de TNB para formar un dímero quimérico.
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comparación unaria (que contiene un valor de 1 para identidades y 0 para no identidades) para nucleótidos y la matriz de comparación ponderada de Gribskov y Burgess 1986, Nucl. Acids Res. 14:6745, como se describe por Schwartz y Dayhoff, eds. 1979, Atlas of Protein Sequence and Structure, National Biomedical Research Foundation, pág. 353-358; (2) una penalización de 3,0 para cada hueco y un penalización de 0,10 adicional para cada símbolo en cada hueco; y (3) sin penalización para huecos terminales. También pueden usarse otros programas usados por un experto en la materia de comparación de secuencias. En base a la descripción anterior, y a la descripción contenida en cualquier lugar de la presente memoria, la presente invención proporciona primer y segundo polinucleótidos como se ha establecido en las reivindicaciones anejas.
E. Síntesis de proteínas quiméricas
Las proteínas quiméricas que comprenden al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y una molécula biológicamente activa pueden sintetizarse usando técnicas muy conocidas en la técnica. Por ejemplo, las proteínas quiméricas de la presente descripción, que incluyen las proteínas quiméricas de la presente invención, pueden sintetizarse recombinantemente en células (véase, por ejemplo, Sambrook y col. 1989, Molecular Cloning A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, N.Y. y Ausubel y col. 1989, Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing Associates and Wiley Interscience, N.Y.). Alternativamente, las proteínas quiméricas de la presente descripción, que incluyen las proteínas quiméricas de la presente invención, pueden sintetizarse usando procedimientos sintéticos conocidos tales como síntesis en fase sólida. Las técnicas sintéticas son muy conocidas en la técnica (véase, por ejemplo, Merrifield, 1973, Chemical Polypeptides (Katsoyannis y Panayotis eds.) pág. 33561; Merrifield 1963, J. Am. Chem. Soc. 85:2149; Davis y col. 1985, Biochem Intl. 10:394; Finn y col. 1976, The Proteins (3ª ed.) 2:105; Erikson y col. 1976, The Proteins (3ª ed.) 2:257; patente de EE.UU. 3.941.763). Alternativamente, las proteínas quiméricas de la presente descripción, que incluyen las proteínas quiméricas de la presente invención, pueden sintetizarse usando una combinación de procedimientos recombinantes y sintéticos. En ciertas aplicaciones puede ser beneficioso usar tanto un procedimiento recombinante como una combinación de procedimientos recombinantes y sintéticos.
Los ácidos nucleicos que codifican una molécula biológicamente activa pueden sintetizarse fácilmente usando técnicas recombinantes muy conocidas en la técnica. Alternativamente, los propios péptidos pueden sintetizarse químicamente. Los ácidos nucleicos de la presente descripción, que incluyen los ácidos nucleicos de la presente invención, pueden sintetizarse mediante procedimientos convencionales conocidos en la técnica, por ejemplo, por el uso de un sintetizador de ADN automatizado (tal como están comercialmente disponibles de Biosearch, Applied Biosystems, etc.). Como ejemplos, oligonucleótidos de fosforotioato pueden sintetizarse mediante el procedimiento de Stein y col. 1988, Nucl. Acids Res. 16:3209, oligonucleótidos de metilfosfonato pueden prepararse por uso de soportes de polímero de vidrio de poro controlado como se describen en Sarin y col. 1988, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:7448. Se conocen procedimientos adicionales de síntesis de ácidos nucleicos en la técnica (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 6.015.881; 6.281.331; 6.469.136).
Las secuencias de ADN que codifican regiones constantes de inmunoglobulina, o fragmentos de las mismas, pueden clonarse a partir de una variedad de bibliotecas de ADN genómico o ADNc conocidas en la técnica. Las técnicas para aislar tales secuencias de ADN usando procedimientos basados en sondas son técnicas convencionales y son muy conocidas para aquellos expertos en la materia. Las sondas para aislar tales secuencias de ADN pueden basarse en secuencias de ADN publicadas (véase, por ejemplo, Hieter y col. 1980, Cell 22:197207). Puede usarse el procedimiento de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) desvelado por Mullis y col. (patente de EE.UU. 4.683.195) y Mullis (patente de EE.UU. 4.683.202). La elección de biblioteca y la selección de sondas para el aislamiento de tales secuencias de ADN está dentro del nivel del experto habitual en la materia. Alternativamente, las secuencias de ADN que codifican inmunoglobulinas o fragmentos de las mismas pueden obtenerse de vectores conocidos en la técnica que contienen inmunoglobulinas o fragmentos de las mismas.
Para la producción recombinante, una primera secuencia de polinucleótidos que codifica una parte de la proteína quimérica de la presente descripción por ejemplo, de la proteína quimérica de la presente invención, (por ejemplo una parte de una región constante de inmunoglobulina) y una segunda secuencia de polinucleótidos que codifica una parte de la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, de la proteína quimérica de la presente invención (por ejemplo, una parte de una región constante de inmunoglobulina y una molécula biológicamente activa, que en el caso de la presente invención es una citocina, una hormona, o un factor de coagulación) se insertan en vehículos de expresión apropiados, es decir, vectores que contienen los elementos necesarios para la transcripción y traducción de la secuencia codificante insertada, o en el caso de un vector viral de ARN, los elementos necesarios para la replicación y traducción. Los ácidos nucleicos que codifican la proteína quimérica se insertan en el vector en la pauta de lectura apropiada.
Los vehículos de expresión se transfectan o co-transfectan entonces en una célula diana adecuada, que expresará los polipéptidos. Técnicas de transfección conocidas en la técnica incluyen, pero no se limitan a, precipitación con fosfato de calcio (Wigler y col. 1978, Cell 14:725) y electroporación (Neumann y col. 1982, EMBO, J. 1:841), y reactivos basados en liposomas. Puede utilizarse una variedad de sistemas de vectores de expresión en huésped para expresar las proteínas quiméricas descritas en la presente memoria que incluyen tanto células procariotas como eucariotas. Éstas incluyen, pero no se limitan a, microorganismos tales como bacterias (por ejemplo, E. coli) transformadas con vectores de expresión de ADN de bacteriófago o ADN de plásmido recombinantes que contienen
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una secuencia codificante apropiada; levadura u hongos filamentosos transformados con vectores de expresión de levadura u hongos recombinantes que contienen una secuencia codificante apropiada; sistemas de células de insecto infectados por vectores de expresión de virus recombinantes (por ejemplo, baculovirus) que contienen una secuencia codificante apropiada; sistemas de células de planta infectados por vectores de expresión en virus recombinantes (por ejemplo, virus del mosaico de la coliflor o virus del mosaico del tabaco) o transformados con vector de expresión en plásmidos recombinantes (por ejemplo, plásmido Ti) que contiene una secuencia codificante apropiada; o sistemas de células de animal, que incluyen células de mamífero (por ejemplo, células CHO, Cos, HeLa).
Si la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención, se sintetiza recombinantemente en una célula procariota, puede desearse replegar la proteína quimérica. La proteína quimérica producida por este procedimiento puede replegarse a una conformación biológicamente activa usando condiciones conocidas en la técnica, por ejemplo, desnaturalizando bajo condiciones reductoras y luego dializando lentamente en PBS.
Dependiendo del sistema de expresión usado, la proteína quimérica expresada se aísla entonces mediante procedimientos bien establecidos en la materia (por ejemplo, cromatografía de afinidad, cromatografía de exclusión por tamaño, cromatografía de intercambio iónico).
Los vectores de expresión pueden codificar marcas que permiten la fácil purificación de la proteína quimérica recombinantemente producida. Ejemplos incluyen, pero no se limitan a, vector pUR278 (Ruther y col. 1983, EMBO J. 2:1791) en el que la proteína quimérica descrita en la presente memoria que codifica secuencias puede ligarse en el vector en marco con la región codificante de lac z de manera que se produzca una proteína híbrida; pueden usarse vectores pGEX para expresar proteínas quiméricas de la presente descripción, por ejemplo, proteínas quiméricas de la presente invención, con una marca de glutatión S-transferasa (GST). Estas proteínas son normalmente solubles y pueden purificarse fácilmente a partir de células por adsorción a perlas de glutatión-agarosa, seguido de elución en presencia de glutatión libre. Los vectores incluyen sitios de escisión (trombina o la proteasa factor Xa o PreScission Protease™ (Pharmacia, Peapack, N.J.)) para la fácil eliminación de la marca después de la purificación.
Para aumentar la eficiencia de producción, los polinucleótidos pueden diseñarse para codificar múltiples unidades de la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, de la proteína quimérica de la presente invención, separada por sitios de escisión enzimática. El polipéptido resultante puede escindirse (por ejemplo, mediante tratamiento con la enzima apropiada) con el fin de recuperar las unidades de polipéptido. Esto puede aumentar el rendimiento de polipéptidos accionados por un único promotor. Cuando se usa en sistemas de expresión virales apropiados, la traducción de cada polipéptido codificado por el ARNm se dirige internamente en el transcrito; por ejemplo, por un sitio interno de entrada al ribosoma, IRES. Así, la construcción policistrónica dirige la transcripción de un único ARNm policistrónico grande que, a su vez, dirige la traducción de múltiples polipéptidos individuales. Este enfoque elimina la producción y procesamiento enzimático de poliproteínas y puede aumentar significativamente el rendimiento de polipéptido accionado por un único promotor.
Los vectores usados en la transformación contendrán normalmente un marcador de selección usado para identificar transformantes. En sistemas bacterianos, esto puede incluir un gen de resistencia a antibióticos tales como ampicilina o kanamicina. Los marcadores de selección para su uso en células de mamífero cultivadas incluyen genes que confieren resistencia a fármacos, tales como neomicina, higromicina y metrotrexato. El marcador de selección puede ser un marcador de selección amplificable. Un marcador de selección amplificable es el gen DHFR. Otro marcador amplificable es el ADNc de DHFR (Simonsen y Levinson 1983, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80:2495). Los marcadores de selección se revisan por Thilly (Mammalian Cell Technology, Butterworth Publishers, Stoneham, MA) y la elección de marcadores de selección está perfectamente dentro del nivel del experto habitual en la materia.
Los marcadores de selección pueden introducirse en la célula sobre un plásmido separado al mismo tiempo que el gen de interés, o pueden introducirse sobre el mismo plásmido. Si es sobre el mismo plásmido, el marcador de selección y el gen de interés pueden estar bajo el control de diferentes promotores o el mismo promotor, produciendo la última disposición un mensaje dicistrónico. Las construcciones de este tipo se conocen en la técnica (por ejemplo, la patente de EE.UU. 4.713.339).
Los elementos de expresión de los sistemas de expresión varían en su concentración y especificidades. Dependiendo del sistema huésped/vector utilizado, pueden usarse distintos elementos de transcripción y traducción adecuados, que incluyen promotores constitutivos e inducibles, en el vector de expresión. Por ejemplo, cuando se clona en sistemas bacterianos pueden usarse promotores inducibles tales como pL de bacteriófago A, plac, ptrp, ptac (promotor híbrido de ptrp-lac) y similares; cuando se clona en sistemas de células de insecto, pueden usarse promotores tales como el promotor poliédrico del baculovirus; cuando se clona en sistemas de célula de planta, pueden usarse promotores derivados del genoma de células vegetales (por ejemplo, promotores de choque térmico; el promotor para la subunidad pequeña de RUBISCO; el promotor para la proteína de unión a clorofila a/b) o de virus de plantas (por ejemplo, el promotor de 35S ARN de CaMV; el promotor de la proteína de la envuelta de TMV); cuando se clona en sistemas de células de mamífero, pueden usarse promotores derivados del genoma de células de mamífero (por ejemplo, promotor de metalotioneína) o de virus de mamífero (por ejemplo, el promotor tardío del adenovirus; el promotor de 7,5 K del virus de la variolovacuna); cuando se generan líneas celulares que contienen
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de células huésped transformadas o transfectadas apropiadamente cultivadas se separa del material celular, y se demuestra la presencia de proteínas quiméricas. Un procedimiento de detección de las proteínas quiméricas, por ejemplo, es por la unión de las proteínas quiméricas o partes de las proteínas quiméricas a un anticuerpo específico que reconoce la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención. Un anticuerpo anti-proteína quimérica puede ser un anticuerpo monoclonal o policlonal producido contra la proteína quimérica en cuestión. Por ejemplo, la proteína quimérica contiene al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina. Los anticuerpos que reconocen la región constante de muchas inmunoglobulinas se conocen en la técnica y están comercialmente disponibles. Un anticuerpo puede usarse para realizar un ELISA o una transferencia Western para detectar la presencia de la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención.
La proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención, puede sintetizarse en un animal transgénico, tal como un roedor, vaca, cerdo, oveja o cabra. El término “animales transgénicos” se refiere a animales no humanos que han incorporado un gen extraño en su genoma. Debido a que este gen está presente en tejidos de la línea germinal, se pasa de padres a hijos. Los genes exógenos se introducen en embriones unicelulares (Brinster y col. 1985, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:4438). Los procedimientos de producción de animales transgénicos se conocen en la técnica, que incluyen transgénicos que producen moléculas de inmunoglobulina (Wagner y col. 1981, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78:6376; McKnight y col. 1983, Cell 34:335; Brinster y col. 1983, Nature 306:332; Ritchie y col. 1984, Nature 312:517; Baldassarre y col. 2003, Theriogenology 59:831; Robl y col. 2003, Theriogenology 59:107; Malassagne y col. 2003, Xenotrasplantation 10(3):267).
La proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención, también puede producirse por una combinación de técnicas de química sintética y recombinantes. Por ejemplo, la parte de una región constante de inmunoglobulina puede expresarse recombinantemente como se ha descrito anteriormente. La molécula biológicamente activa, que en el caso de la presente invención es una citocina, una hormona, o un factor de coagulación, puede producirse usando técnicas de síntesis química conocidas (por ejemplo, síntesis en fase sólida).
La parte de una región constante de inmunoglobulina puede ligarse a la molécula biológicamente activa usando química de ligación apropiada y luego combinarse con una parte de una región constante de inmunoglobulina que no se ha ligado a una molécula biológicamente activa para formar la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención. En un caso de esta descripción, la parte de una región constante de inmunoglobulina es un fragmento Fc. El fragmento Fc puede producirse recombinantemente para formar Cys-Fc y hacerse reaccionar con una molécula biológicamente activa que expresa un tioéster para hacer un híbrido de monómero-dímero. En otro caso se prepara un Fc-tioéster y se hace reaccionar con una molécula biológicamente activa que expresa una cisteína del extremo N (Figura 4).
En un caso, la parte de una región constante de inmunoglobulina ligada a la molécula biológicamente activa formará homodímeros. Los homodímeros pueden alterarse exponiendo los homodímeros a condiciones desnaturalizantes y reductoras (por ejemplo, beta-mercaptoetanol y urea 8 M) y luego combinarse posteriormente con una parte de una región constante de inmunoglobulina no ligada a una molécula biológicamente activa para formar híbridos de monómero-dímero. Los híbridos de monómero-dímero se desnaturalizan entonces y se repliegan dializando en PBS y se aíslan, por ejemplo, por cromatografía de exclusión por tamaño o de afinidad.
En otro caso, la parte de una región constante de inmunoglobulina formará homodímeros antes de ligarse a la molécula biológicamente activa. En este caso, condiciones de reacción para ligar la molécula biológicamente activa al homodímero pueden ajustarse de forma que se favorezca el enlace de la molécula biológicamente activa a solo una cadena del homodímero (por ejemplo, ajustando los equivalentes molares de cada reactante).
La molécula biológicamente activa puede sintetizarse químicamente con una cisteína del extremo N. La secuencia que codifica una parte de una región constante de inmunoglobulina puede subclonarse en un vector que codifica inteína ligada a un dominio de unión a quitina (New England Biolabs, Beverly, MA). La inteína puede ligarse al extremo C de la parte de una región constante de inmunoglobulina. En un caso, la parte de la inmunoglobulina con la inteína ligada a su extremo C puede expresarse en una célula procariota. En otro caso, la parte de la inmunoglobulina con la inteína ligada a su extremo C puede expresarse en una célula eucariota. La parte de región constante de inmunoglobulina ligada a inteína puede hacerse reaccionar con MESNA. En un caso, la parte de una región constante de inmunoglobulina ligada a inteína está unida a una columna, por ejemplo, una columna de quitina y luego se eluye con MESNA. La molécula biológicamente activa y la parte de una inmunoglobulina pueden hacerse reaccionar juntas de forma que se produzca la transposición nucleófila y la molécula biológicamente activa se ligue covalentemente a la parte de una inmunoglobulina mediante un enlace amida (Dawsen y col. 2000, Annu. Rev. Biochem. 69:923). La proteína quimérica sintetizada de esta forma puede incluir opcionalmente un péptido ligante entre la parte de una inmunoglobulina y la molécula biológicamente activa. El ligante puede, por ejemplo, sintetizarse sobre el extremo N de la molécula biológicamente activa. Los ligantes pueden incluir péptidos y/o moléculas orgánicas (por ejemplo, polietilenglicol y/o secuencias de aminoácidos cortas). Esta síntesis recombinante y química combinada permite el rápido cribado de moléculas biológicamente activas y ligantes para optimizar propiedades deseadas de la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo de la proteína quimérica de la presente invención, por ejemplo, inhibición viral, hemostasia, producción de glóbulos rojos, semivida biológica, estabilidad,
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unión a proteínas del suero o alguna otra propiedad de la proteína quimérica. El procedimiento también permite la incorporación de aminoácidos no naturales en la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, en la proteína quimérica de la presente invención, que puede ser útil para optimizar una propiedad deseada de la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, de la proteína quimérica de la presente invención. Si se desea, la proteína quimérica producida por este procedimiento puede replegarse a una conformación biológicamente activa usando condiciones conocidas en la técnica, por ejemplo, condiciones reductoras y luego dializarse lentamente en PBS.
Alternativamente, la cisteína del extremo N puede estar sobre la parte de una región constante de inmunoglobulina, por ejemplo, un fragmento Fc. Un fragmento Fc puede generarse con una cisteína del extremo N aprovechando el hecho de que una Fc nativa tiene una cisteína en la posición 226 (véase Kabat y col. 1991, Sequences of Proteins of Immunological Interest, U.S. Department of Public Health, Bethesda, MD).
Para exponer una cisteína terminal, un fragmento Fc puede expresarse recombinantemente. En un caso, el fragmento Fc se expresa en una célula procariota, por ejemplo, E. coli. La secuencia que codifica la parte de Fc que empieza con Cys 226 (numeración EU) puede colocarse inmediatamente siguiendo a una secuencia que codifica un péptido señal, por ejemplo, OmpA, PhoA, STII. La célula procariota puede someterse a choque osmótico para liberar el fragmento Fc recombinante. En otro caso, el fragmento Fc se produce en una célula eucariota, por ejemplo, una célula CHO, una célula BHK. La secuencia que codifica el fragmento de la parte Fc puede colocarse directamente siguiendo una secuencia que codifica un péptido señal, por ejemplo, cadena ligera de Igκ de ratón o secuencia señal Kb de MHC de clase I, de forma que cuando la proteína quimérica recombinante se sintetice por una célula eucariota, la secuencia señal se escindirá, dejando una cisteína del extremo N que entonces puede aislarse y hacerse reaccionar químicamente con una molécula que lleva un tioéster (por ejemplo, un tioéster en el extremo C si la molécula comprende aminoácidos).
La cisteína del extremo N sobre un fragmento Fc también puede generarse usando una enzima que escinde su sustrato en su extremo N, por ejemplo, factor Xa, enterocinasa, y el producto se aísla y se hace reaccionar con una molécula con un tioéster.
El fragmento Fc recombinantemente expresado puede usarse para preparar homodímeros o híbridos de monómerodímero.
En un caso específico, un fragmento Fc se expresa con el péptido señal de interferón  humano adyacente a la Cys en la posición 226. Si una construcción que codifica este polipéptido se expresa en células CHO, las células CHO escinden el péptido señal en dos posiciones distintas (en Cys 226 y en Val dentro de 2 aminoácidos del péptido señal en la dirección 5' en la dirección del extremo N). Esto genera una mezcla de dos especies de fragmentos Fc (uno con una Val del extremo N y uno con una Cys del extremo N). Esto produce a su vez una mezcla de especies dímeras (homodímeros con Val del extremo N, homodímeros con Cys terminal y heterodímeros en los que una cadena tiene una Cys terminal y la cadena tiene una Val terminal). Los fragmentos Fc pueden hacerse reaccionar con una molécula biológicamente activa que tiene un tioéster en el extremo C y el híbrido de monómero-dímero resultante puede aislarse de la mezcla (por ejemplo, por cromatografía de exclusión por tamaño). Se contempla que cuando otras secuencias de péptidos señal se usen para la expresión de fragmentos Fc en células CHO se generará una mezcla de especies de fragmentos Fc con al menos dos extremos N diferentes.
En otro caso, una Cys-Fc recombinantemente producida puede formar un homodímero. El homodímero puede hacerse reaccionar con péptido que tiene un ligante ramificado sobre el extremo C, en el que el ligante ramificado tiene dos tioésteres del extremo C que pueden hacerse reaccionar con el Cys-Fc. En otro caso, por ejemplo en otra realización de la presente invención, la molécula biológicamente activa tiene un único tioéster no terminal que puede hacerse reaccionar con Cys-Fc. Alternativamente, el ligante ramificado puede tener dos cisteínas del extremo C que pueden hacerse reaccionar con un Fc-tioéster. En otro caso, el ligante ramificado tiene dos grupos funcionales que pueden hacerse reaccionar con el Fc-tioéster, por ejemplo, 2-mercaptoamina. La molécula biológicamente activa puede comprender aminoácidos. La molécula biológicamente activa puede incluir una molécula orgánica pequeña o una molécula inorgánica pequeña.
F. Procedimientos de uso de proteínas quiméricas
Las proteínas quiméricas de la presente descripción tienen muchos usos como se reconocerá por un experto en la materia, que incluyen, pero no se limitan a, procedimientos para tratar un sujeto con una enfermedad o afección. La enfermedad o afección puede incluir, pero no se limita a, una infección viral, un trastorno hemostático, anemia, cáncer, leucemia, una afección inflamatoria o una enfermedad autoinmunitaria (por ejemplo, artritis, psoriasis, lupus eritematoso, esclerosis múltiple) o una infección bacteriana (véanse, por ejemplo, las patentes de EE.UU. 6.086.875, 6.030.613, 6.485.726; documentos WO 03/077834; US2003-0235536A1).
1. Procedimientos de tratamiento de un sujeto con una deficiencia de glóbulos rojos
La presente descripción se refiere a un procedimiento de tratamiento de un sujeto que tiene una deficiencia de glóbulos rojos, por ejemplo, anemia, que comprende administrar una cantidad terapéuticamente eficaz de al menos una proteína quimérica, en la que la proteína quimérica comprende una primera y una segunda cadena de
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Factor XI, Factor XII, Factor V, Factor X o Factor XIII.
a. Afecciones que pueden tratarse
La proteína quimérica de la presente descripción puede usarse para tratar cualquier trastorno hemostático. Los trastornos hemostáticos que pueden tratarse por administración de la proteína quimérica de la presente incluyen, pero no se limitan a, hemofilia A, hemofilia B, enfermedad de von Willebrand, deficiencia de factor XI (deficiencia de PTA), deficiencia de factor XII, además de deficiencias o anomalías estructurales en fibrinógeno, protrombina, factor V, factor VII, factor X o factor XIII.
En un caso, el trastorno hemostático es un trastorno heredado. En un caso, el sujeto tiene hemofilia A y la proteína quimérica comprende factor VIII o factor VIIIa. En otro caso, el sujeto tiene hemofilia A y la proteína quimérica comprende factor VII o factor VIIa. En otro caso, el sujeto tiene hemofilia B y la proteína quimérica comprende factor IX o factor IXa. En otro caso, el sujeto tiene hemofilia B y la proteína quimérica comprende factor VII o factor VIIa. En otro caso, el sujeto tiene anticuerpos inhibidores para factor VIII o factor VIIIa y la proteína quimérica comprende factor VII o factor VIIa. En otro caso más, el sujeto tiene anticuerpos inhibidores contra factor IX o factor IXa y la proteína quimérica comprende factor VII o factor VIIa.
La proteína quimérica de la presente descripción puede usarse para tratar profilácticamente un sujeto con un trastorno hemostático. La proteína quimérica de la presente descripción puede usarse para tratar un episodio hemorrágico agudo en un sujeto con un trastorno hemostático.
En un caso, el trastorno hemostático es el resultado de una deficiencia en un factor de coagulación, por ejemplo, factor IX, factor VIII. En otro caso, el trastorno hemostático puede ser el resultado de un factor de coagulación defectivo, por ejemplo, factor de von Willebrand.
En otro caso, el trastorno hemostático puede ser un trastorno adquirido. El trastorno adquirido puede resultar de una enfermedad o afección secundaria subyacente. La afección sin relacionar puede ser, como un ejemplo, pero no como una limitación, cáncer, una enfermedad autoinmunitaria o embarazo. El trastorno adquirido puede resultar de vejez o de medicación para tratar un trastorno secundario subyacente (por ejemplo, quimioterapia para el cáncer).
4. Procedimientos de tratamiento de un sujeto en necesidad de un agente hemostático general
La presente descripción también se refiere a procedimientos de tratamiento de un sujeto que no tiene un trastorno hemostático o una enfermedad o afección secundaria que produzca adquisición de un trastorno hemostático. Así, la presente descripción se refiere a un procedimiento de tratamiento de un sujeto en necesidad de un agente hemostático general que comprende administrar una cantidad terapéuticamente eficaz de al menos una proteína quimérica, en el que la proteína quimérica comprende una primera y una segunda cadena de polipéptidos en la que la primera cadena de polipéptidos comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y al menos un factor de coagulación y la segunda cadena comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina sin el factor de coagulación de la primera cadena de polipéptidos.
a. Afecciones que pueden tratarse
En un caso, el sujeto en necesidad de un agente hemostático general está sometiéndose a, o va a someterse a, cirugía. La proteína quimérica de la presente descripción puede administrarse antes de o después de cirugía como profiláctico. La proteína quimérica de la presente descripción puede administrarse durante o después de cirugía para controlar un episodio hemorrágico agudo. La cirugía puede incluir, pero no se limita a, trasplante de hígado, resección de hígado o trasplante de citoblastos.
La proteína quimérica de la presente descripción puede usarse para tratar un sujeto que tiene un episodio hemorrágico agudo que no tiene un trastorno hemostático. El episodio hemorrágico agudo puede resultar de traumatismo grave, por ejemplo, cirugía, un accidente de automóvil, herida, laceración, disparo de pistola, o cualquier otro evento traumático que produzca sangrado incontrolado.
5. Modalidades de tratamiento
La proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, una proteína quimérica de la presente invención, puede administrarse intravenosamente, subcutáneamente, intramuscularmente, o mediante cualquier superficie mucosa, por ejemplo, por vía oral, sublingualmente, bucalmente, sublingualmente, nasalmente, rectalmente, vaginalmente o mediante la vía pulmonar. La proteína quimérica puede implantarse dentro de o ligarse a un soporte sólido de biopolímero que permita la lenta liberación de la proteína quimérica al sitio deseado.
La dosis de la proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, de la proteína quimérica de la presente invención, variará dependiendo del sujeto y de la vía de administración particular usada. Las dosificaciones pueden oscilar de 0,1 a 100.000 µg/kg de peso corporal. En un caso, el intervalo de dosificación es 0,1-1.000 µg/kg. La proteína puede administrarse continuamente o en intervalos de tiempo específicos. Pueden emplearse ensayos in vitro para determinar intervalos de dosis y/o programas óptimos para administración. En la técnica se conocen
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muchos ensayos in vitro que miden infectividad viral. Por ejemplo, un ensayo con transcriptasa inversa, o un ensayo de rt-PCR o ensayo de ADN ramificado puede usarse para medir concentraciones de VIH. Puede usarse un ensayo StaClot para medir actividad de coagulación. Adicionalmente, dosis eficaces pueden extrapolarse de curvas de dosis-respuesta obtenidas de modelos animales.
La presente descripción también se refiere a una composición farmacéutica que comprende el inhibidor de la fusión viral, al menos una parte de una inmunoglobulina y un vehículo o excipiente farmacéuticamente aceptable. Ejemplos de vehículos farmacéuticos adecuados se describen en Remington's Pharmaceutical Sciences por E.W. Martin. Ejemplos de excipientes pueden incluir almidón, glucosa, lactosa, sacarosa, gelatina, malta, arroz, harina, tiza, gel de sílice, estearato de sodio, monoestearato de glicerol, talco, cloruro sódico, leche desnatada en polvo, glicerol, propileno, glicol, agua, etanol y similares. La composición también puede contener reactivos de tamponamiento del pH y agentes humectantes o emulsionantes.
Para administración por vía oral, la composición farmacéutica puede tomar la forma de comprimidos o cápsulas preparadas mediante medios convencionales. La composición también puede prepararse como un líquido, por ejemplo, un jarabe o una suspensión. El líquido puede incluir agentes de suspensión (por ejemplo, jarabe de sorbitol, derivados de celulosa o grasas comestibles hidrogenadas), agentes emulsionantes (lecitina o goma arábiga), vehículos no acuosos (por ejemplo, aceite de almendra, ésteres aceitosos, alcohol etílico o aceites vegetales fraccionados) y conservantes (por ejemplo, p-hidroxibenzoatos de metilo o propilo o ácido sórbico). Las preparaciones también pueden incluir aromatizantes, colorantes y edulcorantes. Alternativamente, la composición puede presentarse como un producto seco para constitución con agua u otro vehículo adecuado.
Para administración bucal y sublingual, la composición pueden tomar la forma de comprimidos, pastillas para chupar
o películas de rápida disolución según protocolos convencionales.
Para administración por inhalación, los compuestos para su uso según la presente descripción se administran convenientemente en forma de un espray en aerosol de un envase presurizado o nebulizador (por ejemplo, en PBS), con un propulsor adecuado, por ejemplo, diclorodifluorometano, triclorofluorometano, diclorotetrafluorometano, dióxido de carbono u otro gas adecuado. En el caso de un aerosol presurizado, la unidad de dosificación puede determinarse proveyendo una válvula para administrar una cantidad dosificada. Pueden formularse cápsulas y cartuchos de, por ejemplo, gelatina para su uso en un inhalador o insuflador que contiene una mezcla en polvo del compuesto y un polvo base adecuado tal como lactosa o almidón.
La composición farmacéutica puede formularse para administración parenteral (es decir, intravenosa o intramuscular) mediante inyección en bolo. Las formulaciones para inyección pueden presentarse en forma de dosificación unitaria, por ejemplo, en ampollas o en recipientes multidosis con un conservante añadido. Las composiciones pueden tomar formas tales como suspensiones, disoluciones o emulsiones en vehículos aceitosos o acuosos, y contienen agentes de formulación tales como agentes de suspensión, estabilizantes y/o dispersantes. Alternativamente, el principio activo puede estar en forma de polvo para constitución con un vehículo adecuado, por ejemplo, agua libre de pirógenos.
La composición farmacéutica también puede formularse para administración rectal como un supositorio o enema de retención, por ejemplo, que contiene bases de supositorio convencionales tales como manteca de cacao u otros glicéridos.
6. Terapia de combinación
La proteína quimérica de la presente descripción, por ejemplo, la proteína quimérica de la presente invención, puede usarse para tratar un sujeto con una enfermedad o afección en combinación con al menos otro agente conocido para tratar dicha enfermedad o afección.
En un caso, la presente descripción se refiere a un procedimiento de tratamiento de un sujeto infectado por el VIH que comprende administrar una cantidad terapéuticamente eficaz de al menos una proteína quimérica que comprende una primera y una segunda cadena, en la que la primera cadena comprende un inhibidor de la fusión del VIH y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y la segunda cadena comprende al menos una parte de una inmunoglobulina sin un inhibidor de la fusión del VIH de la primera cadena, en combinación con al menos otro agente anti-VIH. Dicho otro agente anti-VIH puede ser cualquier terapéutico con actividad anti-VIH demostrada. Dicho otro agente anti-VIH puede incluir, como un ejemplo, pero no como una limitación, un inhibidor de proteasa (por ejemplo, Amprenavir®, Crixivan®, Ritonivir®), un análogo de nucleósido de transcriptasa inversa (por ejemplo, AZT, DDI, D4T, 3TC, Ziagen®), un inhibidor de análogo de no nucleósido de transcriptasa inversa (por ejemplo, Sustiva®), otro inhibidor de la fusión del VIH, un anticuerpo neutralizante específico para el VIH, un anticuerpo específico para CD4, un mimético de CD4, por ejemplo, proteína de fusión CD4-IgG2 (solicitud de patente de EE.UU. 09/912.824) o un anticuerpo específico para CCR5, o CXCR4, o un componente de unión específico de CCR5, o CXCR4.
En otro caso, la presente descripción se refiere a un procedimiento de tratamiento de un sujeto con un trastorno hemostático que comprende administrar una cantidad terapéuticamente eficaz de al menos una proteína quimérica que comprende una primera y una segunda cadena, en la que la primera cadena comprende al menos un factor de
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el pH en el intervalo apropiado, por ejemplo, tris, HEPES, PIPES, MOPS. Condiciones adecuadas también pueden incluir un tampón de lavado para eluir especies sin unir del ligando colorante. El tampón de lavado puede ser cualquier tampón que no altere la unión de una especie unida. Por ejemplo, el tampón de lavado puede ser el mismo que el tampón usado en la etapa de puesta en contacto.
Una vez la proteína quimérica se une al ligando colorante, la proteína quimérica se aísla alterando las condiciones adecuadas. Alterar las condiciones adecuadas puede incluir la adición de una sal al tampón. Puede usarse cualquier sal, por ejemplo, NaCl, KCl. La sal debe añadirse a una concentración que sea suficientemente alta para alterar la unión entre el ligando colorante y las especies deseadas, por ejemplo, un híbrido de monómero-dímero.
En algunos casos en los que la mezcla comprende un Fc, un híbrido de monómero-dímero y un dímero, se ha encontrado que Fc no se une al ligando colorante y así se eluye con el flujo continuo. El dímero se une más estrechamente al ligando colorante que el híbrido de monómero-dímero. Así, se requiere una mayor concentración de sal para alterar el enlace (por ejemplo, eluirlo) entre el dímero y el ligando colorante en comparación con la concentración de sales requerida para alterar el enlace entre el ligando colorante y el híbrido de monómero-dímero.
En algunos casos puede usarse NaCl para aislar el híbrido de monómero-dímero de la mezcla. En algunos casos, la concentración de sal apropiada que interrumpe el enlace entre el ligando colorante y el híbrido de monómero-dímero es de 200-700 mM, 300-600 mM, 400-500 mM. En un caso, la concentración de NaCl requerida para alterar la unión entre el ligando colorante y el híbrido de monómero-dímero es 400 mM.
El NaCl también puede usarse para aislar el dímero de la mezcla. Normalmente, el híbrido de monómero-dímero se aísla de la mezcla antes del dímero. El dímero se aísla añadiendo una concentración apropiada de sal al tampón, interrumpiendo así la unión entre el ligando colorante y el dímero. En algunos casos, la concentración apropiada de sal que interrumpe el enlace entre el ligando colorante y el dímero es de 800 mM a 2 M, 900 mM a 1,5 M, 950 mM a 1,2 M. En un caso específico se usa NaCl 1 M para interrumpir la unión entre el ligando colorante y el dímero.
El ligando colorante puede ser un bio-mimético. Un bio-mimético es una sustancia humanizada, dispositivo o sistema que imita a la naturaleza. Así, en algunos casos, el ligando colorante imita el ligando de una molécula que se produce naturalmente. El ligando colorante puede elegirse de Mimetic Red 1™, Mimetic Red 2™, Mimetic Orange 1™, Mimetic Orange 2™, Mimetic Orange 3™, Mimetic Yellow 1™, Mimetic Yellow 2™, Mimetic Green 1™, Mimetic Blue 1™ y Mimetic Blue 2™ (Prometic Biosciences (EE.UU.) Inc., Wayne, NJ). En un caso específico, el ligando colorante es Mimetic Red 2™ (Prometic Biosciences (EE.UU.) Inc., Wayne, NJ). En ciertos casos, el ligando colorante está ligado a un soporte sólido, por ejemplo, de Mimetic Red 1A6XL™, Mimetic Red 2 A6XL™, Mimetic Orange 1 A6XL™, Mimetic Orange 2 A6XL™, Mimetic Orange 3 A6XL™, Mimetic Yellow 1 A6XL™, Mimetic Yellow 2 A6XL™, Mimetic Green 1 A6XL™, Mimetic Blue 1 A6XL™ y Mimetic Blue 2 A6XL™ (Prometic Biosciences (EE.UU.) Inc., Wayne, NJ).
El ligando colorante puede ligarse a un soporte sólido. El soporte sólido puede ser cualquier soporte sólido conocido en la técnica (véase, por ejemplo, www.seperationsNOW.com). Ejemplos de soportes sólidos pueden incluir una perla, un gel, una membrana, una nanopartícula o una microesfera. El soporte sólido puede comprender cualquier material que pueda ligarse a un ligando colorante (por ejemplo, agarosa, poliestireno, Sepharose, Sephadex). Los soportes sólidos pueden comprender cualquier polímero orgánico sintético tal como polímeros poliacrílicos, vinílicos, acrilato, polimetacrilato y poliacrilamida. Los soportes sólidos también pueden comprender un polímero de hidrato de carbono, por ejemplo, agarosa, celulosa o dextrano. Los soportes sólidos pueden comprender óxidos inorgánicos tales como sílice, circonia, titania, ceria, alúmina, magnesia (es decir, óxido de magnesio) u óxido de calcio. Los soportes sólidos también pueden comprender combinaciones de algunos de los soportes anteriormente mencionadas que incluyen, pero no se limitan a, dextrano-acrilamida.
Ejemplos
Ejemplo 1: El peso molecular afecta la transcitosis mediada por FcRn
Se produjeron recombinantemente proteínas quiméricas que comprenden diversas proteínas de interés y Fc de IgG (Sambrook y col. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2 ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, (1989)) o en el caso de contactina-Fc, MAB--gal (un complejo de un anticuerpo monoclonal unido a -gal) (Biodesign International, Saco, ME) y MAB-GH (un complejo de anticuerpo monoclonal y hormona de crecimiento) (Research Diagnostics, Inc. Flanders, NJ) se compraron comercialmente. Brevemente, los genes que codifican la proteína de interés se clonaron por PCR y luego se subclonaron en un plásmido de expresión de fusión de Fc. Los plásmidos se transfectaron en células DG44 CHO y se seleccionaron transfectantes estables y se amplificaron con metrotrexato. Los homodímeros de proteína quimérica se purificaron sobre una columna de proteína A. Las proteínas probadas incluyeron interferón , hormona de crecimiento, eritropoyetina, hormona estimulante del folículo, factor IX, betagalactosidasa, contactina y factor VIII. La unión de las proteínas a partes de inmunoglobulina, que incluye el componente de unión a receptor FcRn, o el uso de complejos de anticuerpo completo (incluyendo la región de unión a FcRn)-antígeno comercialmente disponibles permitió la investigación de transcitosis en función del peso molecular (véase la patente de EE.UU. 6.030.613). Las proteínas quiméricas se administraron a ratas por vía oral y los niveles en suero se midieron 2-4 horas después de la administración usando un ELISA para proteínas quiméricas
recombinantemente producidas y tanto una transferencia Western como ELISA para complejos de anticuerpo comercialmente obtenidos y proteínas quiméricas. Adicionalmente, todos las proteínas o complejos comercialmente obtenidos, además de controles de factor VIII-Fc, factor IX-Fc y Epo-Fc, se yodaron usando IODO (Pierce, Pittsburgh, PA). Los resultados indicaron que los niveles de Fc en suero y las proteínas quiméricas de anticuerpos monoclonales administradas por vía oral a ratas se relacionan directamente con el tamaño de la proteína. El punto de corte aparente para las proteínas quiméricas de Fc administradas por vía oral es entre 200-285 kD (Tabla 2).
TABLA 2
Proteína
Tamaño (kD) Transcitosis
IFN-Fc
92 ++++
GH-Fc
96 +++
Epo-Fc
120 +++
FSH-Fc
170 +++
MAB:GH
172-194 +++
FIX-Fc
200 +
MAB:Gal
285-420 -
Contactina-Fc
300 -
FVIII-Fc
380 -
Ejemplo 2: Clonación de pcADN 3.1-Flag-Fc
10 La secuencia para el péptido FLAG (Asp-Tyr-Lys-Asp-Asp-Asp-Asp-Lys), una marca de afinidad común usada para identificar o purificar proteínas, se clonó en el plásmido pcDNA3.1-Fc, que contiene la secuencia señal de Igκ de ratón, seguido del fragmento Fc de IgG1 humana (aminoácidos 221-447, numeración EU). La construcción se creó por PCR de solapamiento usando los siguientes cebadores:
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15 El molde de pcDNA3.1-Fc se añadió entonces a dos reacciones de PCR separadas que contenían 50 pmoles cada una de los pares de cebadores Flag-Fc-F1/R1 o Flag-Fc-F2/R2 en una reacción de 50 µl usando Pfu Ultra ADN polimerasa (Stratagene, CA) según el protocolo convencional del fabricante en un ciclador térmico MJ usando los siguientes ciclos: 95 ºC 2 minutos; 30 ciclos de (95 ºC 30 segundos, 52 ºC 30 segundos, 72 ºC 45 segundos), seguido de 72 ºC durante 10 minutos. Los productos de estas dos reacciones se mezclaron entonces en otra
20 reacción de PCR (2 µl cada una) con 50 pmoles de cebadores Flag-Fc-F1 y Flag-Fc-R2 en una reacción de 50 µl usando Pfu Ultra ADN polimerasa (Stratagene, CA) según el protocolo convencional del fabricante en un ciclador térmico MJ usando los siguientes ciclos: 95 ºC 2 minutos; 30 ciclos de (95 ºC 30 segundos, 52 ºC 30 segundos, 72 ºC 45 segundos), seguido de 72 ºC durante 10 minutos. El fragmento resultante se purificó en gel, se digirió y se insertó en el plásmido de pcDNA3.1-Fc Nhel-Bam HI. El plásmido resultante contiene la secuencia señal de Igκ de
25 ratón que produce la proteína Flag-Fc.
Ejemplo 3: Clonación de la construcción de factor VII-Fc
La secuencia codificante para factor VII se obtuvo por RT-PCR a partir de ARN de hígado fetal humano (Clontech, Palo Alto, CA). La región clonada comprende la secuencia de ADNc de pb 36 a pb 1430 que termina justo antes del codón de terminación. Se introdujo un sitio Sbfl en el extremo N. Se introdujo un sitio BspEI en el extremo C. La
30 construcción se clonó por PCR usando los cebadores:
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y las siguientes condiciones: 95 ºC durante 5 minutos seguido de 30 ciclos de 95 ºC durante 30 segundos, 55 ºC durante 30 segundos, 72 ºC durante 1 minuto y 45 segundos, y un ciclo de extensión final de 72 ºC durante 10 minutos.
El fragmento se digirió con Sbfl -BspE I y se insertó en pED.dC-Fc, un plásmido que codifica el fragmento Fc de una IgG1.
Ejemplo 4: Clonación de la construcción de factor IX-Fc
La secuencia codificante de factor IX humano, que incluye la secuencia de prepropéptidos, se obtuvo por amplificación por RT-PCR de ARN de hígado humano adulto usando los siguientes cebadores:
natFIX-F: 5'-TTACTGCAGAAGGTTATGCAGCGCGTGAACATG-3' (SEQ ID Nº: 47)
F9-R: 5'-TTTTTCGAATTCAGTGAGCTTTGTTTTTTCCTTAATCC-3' (SEQ ID Nº: 48)
20 ng de ARN de hígado humano adulto (Clontech, Palo Alto, CA) y 25 pmoles de cada cebador se añadieron a una reacción de RT-PCR usando la RT-PCR de una etapa SuperScript™ con el sistema PLATINUM® Taq (Invitrogen, Carlsbad, CA) según el protocolo del fabricante. La reacción se llevó a cabo en un ciclador térmico MJ usando los siguientes ciclos: 50 ºC 30 minutos; 94 ºC 2 minutos; 35 ciclos de (94 ºC 30 segundos, 58 ºC 30 segundos, 72 ºC 1 minuto) y un final 72 ºC 10 minutos. El fragmento se purificó en gel usando el kit de extracción en gel Qiagen (Qiagen, Valencia, CA) y se digirió con PstI-EcoRI, se purificó en gel y se clonó en el digesto correspondiente del plasmido pED.dC.XFc.
Ejemplo 5: Clonación de la construcción de PACE
La secuencia codificante para PACE humana (enzima escisora de aminoácidos básicos apareados), una endoproteasa, se obtuvo por RT-PCR. Se usaron los siguientes cebadores:
PACE-F1: 5'-GGTAAGCTTGCCATGGAGCTGAGGCCCTGGTTGC -3' (SEQ ID Nº: 49)
PACE-R1: 5'-GTTTTCAATCTCTAGGACCCACTCGCC -3' (SEQ ID Nº: 50)
PACE-F2: 5'-GCCAGGCCACATGACTACTCCGC -3' (SEQ ID Nº: 51)
PACE-R2: 5'-GGTGAATTCTCACTCAGGCAGGTGTGAGGGCAGC -3' (SEQ ID Nº: 52)
El cebador de PACE-F1 añade un sitio Hindlll al extremo 5' de la secuencia de PACE que empieza con 3 nucleótidos antes del codón de iniciación, mientras que el cebador de PACE-R2 añade un codón de terminación después del aminoácido 715, que se produce en el extremo del dominio extracelular de PACE, además de añadir un sitio EcoRI al extremo 3' del codón de terminación. Los cebadores de PACE-R1 y -F2 se hibridan en los lados 3' y 5' de un sitio BamHI interno, respectivamente. Entonces se establecieron dos reacciones de RT-PCR usando 25 pmoles de cada uno de los pares de cebadores de PACE-F1/R1 o PACE-F2/R2 con 20 ng de ARN de hígado humano adulto (Clontech; Palo Alto, CA) en una reacción de RT-PCR de 50 µl usando la RT-PCR de una etapa SuperScript™ con sistema PLATINUM® Taq (Invitrogen, Carlsbad, CA) según el protocolo del fabricante. La reacción se llevó a cabo en un ciclador térmico MJ usando los siguientes ciclos: 50 ºC 30 minutos; 94 ºC 2 minutos; 30 ciclos de (94 ºC 30 segundos, 58 ºC 30 segundos, 72 ºC 2 minutos), seguido de 72 ºC 10 minutos. Estos fragmentos se ligaron cada uno en el vector pGEM T-Easy (Promega, Madison, WI) y se secuenciaron completamente. El fragmento de F2-R2 se subclonó entonces en pcDNA6 V5/His (Invitrogen, Carlsbad, CA) usando los sitios BamHI/EcoRl, y entonces el fragmento de F1-R1 se clonó en esta construcción usando los sitios HindIII/BamHI. El plásmido final, pcDNA6-PACE, produce una forma soluble de PACE (aminoácidos 1-715), ya que se ha delecionado la región transmembrana. La secuencia de PACE en pcDNA6-PACE es esencialmente como se describe en Harrison y col. 1998, Seminars in Hematology 35:4.
Ejemplo 6: Clonación de la construcción del ligante de ocho aminoácidos de IFN-Fc
La secuencia codificante de interferón  2b humano (hIFN), que incluye la secuencia señal, se obtuvo por PCR a partir de ADN genómico humano usando los siguientes cebadores:
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Se preparó ADN genómico a partir de la línea celular de astrocitoma humano 373MG según procedimientos
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Ejemplo 10: Clonación de la construcción de eritropoyetina-Fc de péptido ácido
La región bisagra del fragmento Fc de IgG1 humana en EPO-Fc del aminoácido 221-229 (numeración EU) se sustituyó con un péptido ácido (CCA). Se usaron cuatro oligonucleótidos solapantes (IDT, Coralville, IA):
1.
Sentido 1 de Epo-CCA-Fc:
2.
Sentido 2 de Epo-CCA-Fc:
3.
Antisentido 1 de Epo-CCA-Fc:
4.
Antisentido 2 de Epo-CCA-Fc:
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Los oligonucleótidos se reconstituyeron a una concentración de 50 µM con dH2O. 5 µl de cada oligonucleótido se hibridaron entre sí combinando en un tubo de PCR de pared delgada con 2,2 µl de tampón de restricción nº 2 (New England Biolabs, Beverly, MA) y se calentaron a 95 ºC durante 30 segundos y luego se dejaron enfriar lentamente durante 2 horas a 25 ºC. 5 pmoles de los oligonucleótidos ahora hibridados se ligaron en un vector pGEM T-Easy como se ha indicado en el manual del kit (Promega, Madison, WI). La mezcla de ligación se añadió a 50 µl de células de E. coli competentes DH5 (Invitrogen, Carlsbad, CA) sobre hielo durante 2 minutos, se incubaron a 37 ºC 5 minutos, se incubaron sobre hielo durante 2 minutos y luego se sembraron en placas de agar de LB+100 µg/l de ampicilina y se pusieron a 37 ºC durante 14 horas. Las colonias bacterianas individuales se recogieron y se pusieron en 5 ml de LB+100 µg/l de ampicilina y se dejaron crecer durante 14 horas. Los tubos se centrifugaron a 2000 x g, 4 ºC durante 15 minutos y el vector ADN se preparó usando el kit Qiagen miniprep (Qiagen, Valencia, CA) como se indica en el manual del kit. Se digirieron 2 µg de ADN con Age I-Rsr-II. El fragmento se purificó en gel por el procedimiento QIAquick como se ha enseñado en el manual del kit (Qiagen, Valencia, CA) y se ligó en pED.Epo Fc.1 Age I-Rsr II. La ligación se transformó en células de E. coli competentes DH5 y se preparó ADN como se ha descrito anteriormente.
Ejemplo 11: Clonación de la construcción de Cys-Fc
Usando PCR y técnicas de biología molecular convencional (Sambrook y col. 1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2ª ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press), una construcción de expresión de mamífero se generó de forma que la secuencia codificante para el péptido señal de IFN humano se apoyara directamente contra la secuencia codificante de Fc que empieza en el primer residuo de cisteína (Cys 226, numeración EU). Tras la escisión y secreción de peptidasa señal de células de mamífero así se generó una proteína Fc con un residuo de cisteína del extremo N. Brevemente, los cebadores
IFNa-Sig-F (IFNa-Sig-F: 5'-GCTACTGCAGCCACCATGGCCTTGACCTT TGCTTTAC-3')(SEQ ID NO:71) y Cys-Fc-R (5'-CAGTTCCGGAGCTGGGCACGGCGGAGAGCCCACAGAGCAGCTTG-3') (SEQ ID Nº: 72) se usaron en una reacción de PCR para crear un fragmento que enlazara la secuencia señal de IFNa con el extremo N de Fc, empezando con Cys 226. 500 ng del ligante  de pED.dC.hIFN nativo se añadieron a 25 pmoles de cada cebador en una reacción de PCR con el sistema Expand High Fidelity (Boehringer Mannheim, Indianápolis, IN) según el protocolo convencional del fabricante. La reacción se llevó a cabo en un ciclador térmico MJ usando los siguientes ciclos: 94 ºC 2 minutos; 30 ciclos de (94 ºC 30 segundos, 50 ºC 30 segundos, 72 ºC 45 segundos) y finalmente 72 ºC 10 minutos. La banda de tamaño esperado (∼112 pb) se purificó en gel con un kit de extracción en gel (Qiagen, Valencia CA), se digirió con las enzimas de restricción Pstl y BspEI, se purificó en gel y se subclonó en los sitios correspondientes del ligante  de pED.dC.hIFN nativo para generar pED.dC.Cys-Fc (Figura 5).
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MES 20 mM, NaCl 20 mM, pH 6,1. El material dializado se cargó entonces sobre una columna de 1,1 x 11 cm (9,9 ml) a 150 cm/hora. Durante el lavado y la elución, la velocidad de flujo aumentó a 500 cm/hora. La columna se lavó secuencialmente con 8 volúmenes de columna de MES 20 mM, NaCl 20 mM, pH 6,1 y 8 volúmenes de columna de MES 20 mM, NaCl 40 mM, pH 6,1. La proteína unida se eluyó con MES 20 mM, NaCl 750 mM, pH 6,1. Las fracciones de elución que contienen el pico de proteína se reunieron y se esterilizaron por filtración a través de un disco de filtro de 0,2 µm antes del almacenamiento a -80 ºC.
Se usó una columna de afinidad de MAB anti-FLAG para separar dímeros quiméricos de Fc con HFVII fusionado a ambas moléculas de Fc de aquellas con un péptido FLAG y una fusión de HFVII. El conjunto Unosphere S Eluate se diluyó 1:1 con Tris 20 mM, NaCl 50 mM, CaCl2 5 mM, pH 8, y se cargó sobre una columna de Sepharose de 1,6 x 5 cm M2 anti-FLAG (Sigma Corp., St. Louis, MO) a una velocidad de flujo lineal de 60 cm/hora. La carga se dirigió a < 2,5 mg de híbrido de monómero-dímero /ml de volumen de columna. Después de cargar la columna se lavó con 5 volúmenes de columna de Tris 20 mM, NaCl 50 mM, CaCl2 5 mM, pH 8,0, los híbridos de monómero-dímero se eluyeron entonces con glicina 100 mM, pH 3,0. Las fracciones de elución que contenían el pico de proteína se neutralizaron entonces añadiendo 1 parte de Tris-HCl 1 M, pH 8, a 10 partes de fracción eluida. Los conjuntos se almacenaron a -80 ºC.
Ejemplo 14: Expresión y purificación de homodímero e híbrido de monómero-dímero de factor IX-Fc
Se establecieron células CHO DG-44 que expresan factor IX-Fc. Se sembraron células DG44 en placas de Petri de cultivo de tejido de 100 mm y se cultivaron a una confluencia del 50%-60%. Se usó un total de 10 µg de ADN para transfectar una placa de 100 mm: para la transfección del homodímero se usaron 8 µg de pED.dC.factor IX-Fc + 2 µg de pcDNA6-PACE; para la transfección del híbrido de monómero-dímero se usaron 8 µg de pED.dC.factor IX-Fc
+ 1 µg de pcDNA3-Flag-Fc + 1 µg de pcDNA6-PACE. Las células se transfectaron como se describe en el manual del reactivo de transfección Superfect (Qiagen, Valencia, CA). El medio se eliminó de la transfección después de 48 horas y se sustituyó con MEM Alfa sin nucleósidos más 5% de suero bovino fetal dializado y 10 µg/ml de blasticidina (Invitrogen, Carlsbad, CA) para ambas transfecciones, mientras que la transfección del híbrido de monómero-dímero también se complementó con 0,2 mg/ml de geneticina (Invitrogen, Carlsbad, CA). Después de 3 días, las células se liberaron de la placa con 0,25% de tripsina y se transfirieron a matraces de cultivo de tejido T25, y la selección continuó durante 10-14 días hasta que las células empezaron a crecer bien a medida que se establecieron líneas celulares estables. La expresión de proteína se amplificó posteriormente mediante la adición de metrotrexato 10 nM
o 100 nM para el homodímero o híbrido de monómero-dímero, respectivamente.
Para ambas líneas celulares se usaron aproximadamente 2 x 107 células para inocular 300 ml de medio de crecimiento en una botella rotatoria de 1700 cm2 (Coming, Coming, NY) complementado con 5 µg/L de vitamina K3 (menadiona bisulfito de sodio) (Sigma, St. Louis, MO). Las botellas rotatorias se incubaron en 5% de CO2 a 37 ºC durante aproximadamente 72 horas. El medio de crecimiento se intercambió con 300 ml de medio de producción libre de suero (DMEM/F12 con 5 µg/ml de insulina bovina y 10 µg/ml de gentamicina) complementado con 5 µg/L de vitamina K3. El medio de producción (medio acondicionado) se recogió cada día durante 10 días y se guardó a 4 ºC. Se añadió medio de producción fresco a las botellas rotatorias después de cada recogida y las botellas se devolvieron a la estufa de incubación. Antes de la cromatografía, el medio se clarificó usando un filtro SuporCap-100 (0,8/0,2 µm) (Pall Gelman Sciences, Ann Arbor, MI). Todas las siguientes etapas se realizaron a 4 ºC. El medio clarificado se aplicó a proteína A-Sepharose, se lavó con 5 volúmenes de columna de 1X PBS (fosfato 10 mM, pH 7,4, KCl 2,7 mM y NaCl 137 mM), se eluyó con glicina 0,1 M, pH 2,7, y luego se neutralizó con 1/10 volumen de Tris-HCl 1 M, pH 9,0. La proteína se dializó entonces en PBS.
La muestra de proteína de transfección del híbrido de monómero-dímero se sometió a más purificación, ya que contuvo una mezcla de homodímero de FIX-Fc:FIX-Fc, híbrido de monómero-dímero de FIX-Fc:Flag-Fc y homodímero de Flag-Fc:Flag-Fc. El material se concentró y se aplicó a una columna de 2,6 cm x 60 cm (318 ml) Superdex 200 Prep Grade a una velocidad de flujo de 4 ml/minuto (36 cm/hora) y luego se eluyó con 3 volúmenes de columna de 1X PBS. Las fracciones correspondientes a dos picos en el detector de UV se recogieron y se analizaron por SDS-PAGE. Las fracciones del primer pico contuvieron tanto homodímero de FIX-Fc:FIX-Fc como híbrido de monómero-dímero de FIX-Fc:Flag-Fc, mientras que el segundo pico contuvo homodímero de Flag-Fc:Flag-Fc. Todas las fracciones que contenían el híbrido de monómero-dímero, pero no el homodímero de Flag-Fc, se reunieron y se aplicaron directamente a una columna de Sepharose de 1,6 x 5 cm M2 anti-FLAG (Sigma Corp., St. Louis, MO) a una velocidad de flujo lineal de 60 cm/hora. Después de la carga, la columna se lavó con 5 volúmenes de columna de PBS. Los híbridos de monómero-dímero se eluyeron entonces con glicina 100 mM, pH 3,0. Las fracciones de elución que contenían la proteína pico se neutralizaron entonces añadiendo 1/10 volumen de Tris-HCl 1 M y se analizaron por SDS-PAGE reductora y no reductora. Las fracciones se dializaron en PBS, se concentraron a 1-5 mg/ml y se guardaron a -80 ºC.
Ejemplo 15: Expresión y purificación de homodímero e híbrido de monómero-dímero de IFN
Se establecieron células CHO DG-44 que expresan hIFN. Células DG44 se sembraron en placas de Petri de cultivo de tejido de 100 mm y se cultivaron a una confluencia del 50%-60%. Se usó un total de 10 µg de ADN para transfectar una placa de 100 mm: para la transfección del homodímero 10 µg de las construcciones de hIFN-Fc; para la transfección del híbrido de monómero-dímero 8 µg de las construcciones de hIFN-Fc + 2 µg de pcDNA3
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centrifugación a temperatura ambiente a una velocidad de 1268 x g. Las muestras de plasma se ensayaron tanto frescas como congeladas a 20 ºC. El híbrido de monómero-dímero dosificado por vía oral produjo concentraciones en suero máximas (Cmáx) significativamente mayores en comparación con el factor VII homodimérico (Figura 8).
Ejemplo 22: Dosificación oral de ratas neonatas con factor IX-Fc
Ratas neonatas Sprague-Dawley de diez días de edad se dosificaron p.o. con 200 µl de homodímero de FIX-Fc o híbrido de monómero-dímero de FIX-Fc:Flag-Fc a dosis aproximadamente equimolares de 10 nmol/kg en tampón fosfato de sodio 0,1 M, pH 6,5 que contiene 5 mg/ml de inhibidor de tripsina de soja y 0,9% de NaCl. A 1, 2, 4, 8, 24, 48 y 72 horas después de la inyección, los animales se sacrificaron con CO2, se extrajo sangre mediante punción cardíaca y se obtuvo plasma mediante la adición de una disolución al 3,8% de citrato de sodio y centrifugación a temperatura ambiente a una velocidad de 1268 x g. Las muestras se sedimentaron entonces por centrifugación, se recogió el suero y se congeló a -20 ºC hasta el análisis de las proteínas de fusión por ELISA.
Ejemplo 23: ELISA de factor IX-Fc
Una placa de ELISA Immulon 4HBX de 96 pocillos (Thermo LabSystems, Vantaa, Finlandia) se recubrió con 100 µl/pocillo de IgG de cabra anti-factor IX (Affinity Biologicals, Ancaster, Canadá) diluida 1:100 en tampón carbonato 50 mM, pH 9,6. Las placas se incubaron a temperatura ambiente durante 2 horas o durante la noche a 4 ºC cerradas con película de plástico. Los pocillos se lavaron 4 veces con PBST, 300 µl/pocillo usando el lavador de placas TECAN. Los pocillos se bloquearon con PBST + 6% de BSA, 200 µl/pocillo, y se incubaron 90 minutos a temperatura ambiente. Los pocillos se lavaron 4 veces con PBST, 300 µl/pocillo usando el lavador de placas TECAN. Los patrones y muestras de sangre de ratas descritos en el Ejemplo 18 se añadieron a los pocillos (100 µl/pocillo) y se incubaron 90 minutos a temperatura ambiente. Las muestras y patrones se diluyeron en tampón HBET (HBET: 5,95 g de HEPES, 1,46 g de NaCl, 0,93 g de Na2EDTA, 2,5 g de albúmina de suero bovino, 0,25 ml de Tween-20, llevar a 250 ml con dH2O, ajustar a pH 7,2). El intervalo de la curva patrón fue de 200 ng/ml a 0,78 ng/ml con diluciones de 2 veces entre ellas. Los pocillos se lavaron 4 veces con PBST, 300 µl/pocillo usando el lavador de placas TECAN. A cada pocillo se añadieron 100 µl/pocillo de anticuerpo de cabra anti-IgG humana-Fc-HARP conjugado (Pierce, Rockford, IL) diluido en HBET 1:25.000. Las placas se incubaron 90 minutos a temperatura ambiente. Los pocillos se lavaron 4 veces con PBST, 300 µl/pocillo usando el lavador de placas TECAN. Las placas se revelaron con 100 µl/pocillo de sustrato de peroxidasa de tetrametilbencidina (TMB) (Pierce, Rockford, IL) añadido según las instrucciones del fabricante. Las placas se incubaron 5 minutos a temperatura ambiente en la oscuridad o hasta que se reveló el color. La reacción se detuvo con 100 µl/pocillo de ácido sulfúrico 2 M. La absorbancia se leyó a 450 nm en el lector SpectraMax plusplate (Molecular Devices, Sunnyvale, CA). El análisis de sangre extraído a las 4 horas indicó una diferencia de más de 10 veces en la concentración en suero entre híbridos de monómero-dímero de factor IX-Fc en comparación con homodímeros de factor IX-Fc (Figura 9). Los resultados indicaron que los niveles de híbrido de monómero-dímero de factor IX-Fc fueron coherentemente superiores a los de homodímeros del factor IX-Fc (Figura 10).
Ejemplo 24: Clonación de Epo-Fc
Se obtuvo la región codificante de Epo madura por amplificación por PCR de un plásmido que codifica la secuencia codificante de eritropoyetina madura, originalmente obtenida por RT-PCR de ARNm de Hep G2, y cebadores hepoxba-F y hepoeco-R, indicados más adelante. El cebador hepoxba-F contiene un sitio Xbal, mientras que el cebador hepoeco-R contiene un sitio EcoRI. La PCR se llevó a cabo en el Idaho Technology RapidCycler usando Vent polimerasa, desnaturalizando a 95 ºC durante 15 segundos, seguido de 28 ciclos con una pendiente de 6,0 de 95 ºC durante 0 segundos, 55 ºC durante 0 segundos y 72 ºC durante 1 minuto 20 segundos, seguido de extensión de 3 minutos a 72 ºC. Un producto de aproximadamente 514 pb se purificó en gel, se digirió con XbaI y EcoRI, se purificó en gel de nuevo y se subclonó direccionalmente en un vector pED.dC.XFc purificado en gel digerido con XbaI/EcoRI, mencionado anteriormente. Esta construcción se llamó pED.dC.Epo-Fc.
La secuencia de Epo, que contiene tanto el péptido señal endógeno como la secuencia madura, se obtuvo por amplificación por PCR usando una preparación de ADNc del clon QUICK de riñón adulto como molde y cebadores Epo+Pep-Sbf-F y Epo+Pep-Sbf-R, descritos más adelante. El cebador Epo+Pep-Sbf-F contiene un sitio SbfI en la dirección 5' del codón de iniciación, mientras que el cebador Epo+Pep-Sbf-R se hibrida en la dirección 3' del sitio SbfI endógeno en la secuencia Epo. La reacción de PCR se llevó a cabo en el ciclador térmico PTC-200 MJ usando Expand polimerasa, desnaturalizando a 94 ºC durante 2 minutos, seguido de 32 ciclos de 94 ºC durante 30 segundos, 57 ºC durante 30 segundos y 72 ºC durante 45 segundos, seguido de una extensión de 10 minutos a 72 ºC. Un producto de aproximadamente 603 pb se aisló en gel y se subclonó en el vector pGEM-T Easy. La secuencia codificante correcta se escindió por digestión con SbfI, se purificó en gel y se clonó en el plásmido pED.dC.Epo-Fc digerido con PstI, tratado con fosfatasa alcalina de gamba (SAP) y purificado en gel. El plásmido con el inserto en la orientación correcta se determinó inicialmente por digestión con Kpnl. Una digestión Xmnl y Pvull de esta construcción se comparó con pED.dC.Epo-Fc y se confirmó que estaba en la orientación correcta. La secuencia se determinó y la construcción se llamó pED.dC.natEpo-Fc. Cebadores de PCR:
hepoxba-F (EPO-F): 5'-AATCTAGAGCCCCACCACGCCTCATCTGTGAC-3' (SEQ ID Nº: 75)
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Ejemplo 26: Expresión y purificación de homodímero e híbrido de monómero-dímero de EPO-Fc
Células DG44 se sembraron en placas de Petri de cultivo de tejido de 100 mm y se cultivaron a una confluencia del 50%-60%. Un total de 10 µg de ADN se usó para transfectar una placa de 100 mm: para la transfección del homodímero 10 µg de pED.dC.EPO-Fc; para la transfección del híbrido de monómero-dímero 8 µg de pED.dC.EPO-Fc + 2 µg de pcDNA3-Flag-Fc. Las construcciones usadas se clonaron como se describe en el Ejemplo 24. El procedimiento de clonación descrito en el Ejemplo 25 también podría usarse para obtener construcciones para su uso en este ejemplo. Las células se transfectaron como se describe en el manual del reactivo de transfección Superfect (Qiagen, Valencia, CA). Alternativamente, pED.dC.EPO-Fc se cotransfectó con pSYN-Fc-016 para preparar un monómero sin marcar. El medio se eliminó de la transfección después de 48 horas y se sustituyó con MEM Alfa sin nucleósidos más 5% de suero bovino fetal dializado para ambas transfecciones, mientras que la transfección del híbrido de monómero-dímero también se complementó con 0,2 mg/ml de geneticina (Invitrogen, Carlsbad, CA). Después de 3 días, las células se liberaron de la placa con 0,25% de tripsina y se transfirieron a matraces de cultivo de tejido T25, y la selección continuó durante 10-14 días hasta que las células empezaron a crecer bien a medida que se establecieron líneas celulares estables. La expresión de proteína se amplificó posteriormente mediante la adición de metrotrexato.
Para ambas líneas celulares, aproximadamente 2 x 107 células se usaron para inocular 300 ml de medio de crecimiento en una botella rotatoria de 1700 cm2 (Corning, Coming, NY). Las botellas rotatorias se incubaron en 5% de CO2 a 37 ºC durante aproximadamente 72 horas. El medio de crecimiento se intercambió con 300 ml de medio de producción libre de suero (DMEM/F12 con 5 µg/ml de insulina bovina y 10 µg/ml de gentamicina). El medio de producción (medio acondicionado) se recogió cada día durante 10 días y se guardó a 4 ºC. Se añadió medio de producción fresco a las botellas rotatorias después de cada recogida y las botellas se devolvieron a la estufa de incubación. Antes de la cromatografía, el medio se clarificó usando un filtro SuporCap-100 (0,8/0,2 µm) de Pall Gelman Sciences (Ann Arbor, MI). Todas las siguientes etapas se realizaron a 4 ºC. El medio clarificado se aplicó a proteína A-Sepharose, se lavó con 5 volúmenes de columna de 1X PBS (fosfato 10 mM, pH 7,4, KCl 2,7 mM y NaCl 137 mM), se eluyó con glicina 0,1 M, pH 2,7, y luego se neutralizó con 1/10 volumen de Tris-HCl 1 M, pH 9,0. La proteína se dializó entonces en PBS.
La muestra de proteína de transfección del híbrido de monómero-dímero se sometió a más purificación, ya que contuvo una mezcla de homodímero de EPO-Fc:EPO-Fc, híbrido de monómero-dímero EPO-Fc:Flag-Fc y homodímero de Flag-Fc:Flag-Fc. El material se concentró y se aplicó a una columna de 2,6 cm x 60 cm (318 ml) Superdex 200 Prep Grade a una velocidad de flujo de 4 ml/min (36 cm/hora) y luego se eluyó con 3 volúmenes de columna de 1X PBS. Las fracciones correspondientes a dos picos en el detector de UV se recogieron y se analizaron por SDS-PAGE. Las fracciones del primer pico contuvieron tanto homodímero de EPO-Fc:EPO-Fc como híbrido de monómero-dímero de EPO-Fc:Flag-Fc, mientras que el segundo pico contuvo homodímero de Flag-Fc:Flag-Fc. Todas las fracciones que contienen el híbrido de monómero-dímero, pero no el homodímero de Flag-Fc, se reunieron y se aplicaron directamente a una columna de Sepharose 1,6 x 5 cm M2 anti-FLAG (Sigma Corp.) a una velocidad de flujo lineal de 60 cm/hora. Después de la carga la columna se lavó con 5 volúmenes de columna de PBS. Los híbridos de monómero-dímero se eluyeron entonces con glicina 100 mM, pH 3,0. Las fracciones de elución que contenían el pico de proteína se neutralizaron entonces añadiendo 1/10 volumen de Tris-HCl 1 M, y se analizaron por SDS-PAGE reductora y no reductora. Las fracciones se dializaron en PBS, se concentraron a 1-5 mg/ml y se guardaron a -80 ºC.
Alternativamente, las fracciones del primer pico de Superdex 200 se analizaron por SDS-PAGE, y solo fracciones que contenían una mayoría de híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc, con una minoría de homodímero de Epo-Fc, se reunieron. Este conjunto, enriquecido para el híbrido de monómero-dímero, se volvió a aplicar a una columna Superdex 200 y luego se reunieron las fracciones que contenían solo híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc, se dializaron y se guardaron como proteína purificada. Obsérvese que este procedimiento de purificación alternativo también podría usarse para purificar híbridos de monómero-dímero no marcados.
Ejemplo 27: Administración de dímero e híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc con un ligante de ocho aminoácidos a monos cinomolgos
Para administración pulmonar, aerosoles de tanto proteínas del dímero de Epo-Fc como del híbrido de monómerodímero de Epo-Fc (ambas con el ligante de 8 aminoácidos) en PBS, pH 7,4 se crearon con el nebulizador Aeroneb Pro™ (AeroGen, Mountain View, CA), en línea con un respirador de Bird Mark 7A, y se administraron a monos cinomolgos sin tratamiento previo anestesiados mediante tubos endotraqueales (que se aproximan a la respiración tidal normal). Ambas proteínas también se administraron a monos cinomolgos sin tratamiento previo mediante inyección intravenosa. Las muestras se tomaron en diversos momentos de tiempo, y la cantidad de proteína que contiene Epo en el plasma resultante se cuantificó usando Quantikine IVD Human Epo Immunoassay (R&D Systems, Mineápolis, MN). Los parámetros farmacocinéticos se calcularon usando el software WinNonLin. La Tabla 4 presenta los resultados de biodisponibilidad de monos cinomolgos tratados con el híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc o el dímero de Epo-Fc.
TABLA 4: ADMINISTRACIÓN DEL HÍBRIDO DE MONÓMERO-DÍMERO DE EPO-FC Y DÍMERO DE EPO-FC A
MONOS
Proteína
Mono nº Vía Dosis depositada aprox.1 (µg/kg) Cmáx (ng/ml) Cmáx (fmol/ml) t1/2 (h) t1/2 prom(h)
Híbrido de monómerodímero de Epo-Fc
CO6181 pulm 20 72,3 1014 23,6 25,2
CO6214
pulm 20 50,1 703 23,5
CO7300
pulm 20 120 1684 36,2
CO7332
pulm 20 100 1403 17,5
CO7285
IV 25 749 10508 21,3 22,6
CO7288
IV 25 566 7941 23
CO7343
IV 25 551 1014 23,5
Dímero de Epo-Fc
DD026 pulm 15 10,7 120 11,5 22,1
DD062
pulm 15 21,8 244 27,3
DD046
pulm 15 6,4 72 21,8
DD015
pulm 15 12,8 143 20,9
DD038
pulm 35 27 302 29
F4921
IV 150 3701 41454 15,1 14,6
96Z002
IV 150 3680 41219 15,3
1261CQ
IV 150 2726 30533 23,6
127-107
IV 150 4230 47379 15,0
118-22
IV 150 4500 50403 8,7
126-60
IV 150 3531 39550 9,8
1Basado en el 15% de fracción de deposición de dosis nebulizada como se ha determinado por escintigrafía gamma
El porcentaje de biodisponibilidad (F) se calculó para la dosis pulmonar usando la siguiente ecuación: F = (ABC pulmonar / Dosis pulmonar) / (ABC IV / Dosis IV) * 100
TABLA 5: CÁLCULO DEL PORCENTAJE DE BIODISPONIBILIDAD PARA HÍBRIDO DE MONÓMERO-DÍMERO FRENTE A DÍMERO DE EPO-FC DESPUÉS DE LA ADMINISTRACIÓN PULMONAR A MONOS CINOMOLGOS
SIN TRATAMIENTO PREVIO
Proteína
Mono nº Dosis depositada aprox.1 (µg/kg) ABC ng·h/ml Biodisponibilidad2 (F) Biodisponibilidad promedio
Híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc
CO6181 20 µg/kg 3810 25,2% 34,9%
CO6214
20 µg/kg 3072 20,3%
CO7300
20 µg/kg 9525 63,0%
CO7332
20 µg/kg 4708 31,1%
Dímero de Epo-Fc
DD026 15 µg/kg 361 5,1% 10,0%
DD062
15 µg/kg 1392 19,6%
DD046
15 µg/kg 267 3,8%
DD015
15 µg/kg 647 9,1%
DD038
35 µg/kg 2062 12,4%
1 Basado en el 15% de fracción de deposición de dosis nebulizada como se ha determinado por escintigrafía gamma 2 ABC media para híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc IV = 18,913 ng·h/ml (n=3 monos), dosificado a 25 µg/kg. ABC media para dímero de Epo-Fc IV = 70,967 ng·h/ml (n=6 monos), dosificado a 150 µg/kg
5 La farmacocinética de Epo-Fc con un ligante de 8 aminoácidos administrada a monos cinomolgos se presenta en la Figura 11. La Figura compara el dímero de Epo-Fc con el híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc en monos después de la administración de una única dosis pulmonar. Basándose en una comparación molar, se obtuvieron niveles en suero significativamente grandes en monos tratados con el híbrido de monómero-dímero en comparación con el dímero.
10 Ejemplo 28: Administración subcutánea de híbrido de monómero-dímero de EPO-Fc
Para comparar concentraciones en suero de agentes de eritropoyetina conocidos con híbridos de monómero-dímero de EPO-Fc, tanto el híbrido de monómero-dímero de EPO-Fc como Aranesp® (darbepoyetina alfa), que no es una proteína quimérica de fusión, se administraron subcutáneamente a diferentes monos y la concentración en suero de ambos se midió con el tiempo.
15 Se inyectaron subcutáneamente monos cinomolgos (n = 3 por grupo) con 0,025 mg/kg de híbrido de monómerodímero de Epo-Fc. Las muestras de sangre se recogieron antes de la dosis y en momento de hasta 144 horas después de la dosis. Se preparó suero a partir de la sangre y se guardó congelado hasta el análisis por ELISA (Human Epo Quantikine Immunoassay) (R & D Systems, Mineápolis, MN). Los parámetros farmacocinéticos se determinaron usando el software WinNonLinâ® (Pharsight, Mountainview, CA).
20 Los resultados indicaron que las concentraciones en suero de tanto el híbrido de monómero-dímero de EPO-Fc como Aranesp® (darbepoyetina alfa) fueron equivalentes con el tiempo, aun cuando la dosis molar administrada de Aranesp® (darbepoyetina alfa) fuera ligeramente mayor (Tabla 6) (Figura 12).
TABLA 6
Vía
Dosis (µg/kg) Dosis (nmol/kg) Cmáx (ng/ml) ABC (ng·h·ml-1) T1/2 (h) % de biodisponibilidad (F)
Híbrido de monómerodímero de Epo-Fc
Subcutánea 25 0,3 133 ± 34 10,745 ± 3,144 26 ± 5 57 ± 17
Aranesp®
Subcutánea 20 0,54 83±11 5390 ± 747 22 ± 2 53 ± 8
25 Ejemplo 29: Administración intravenosa de híbrido de monómero-dímero de EPO-Fc Para comparar concentraciones en suero de agentes de eritropoyetina conocidos con híbridos de monómero-dímero 43
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Seq señal de rc-Igk-F: 5’-TTTAAGCTTGCCGCCACCATGGAGACAGACACACTCC TGCTATGGGTACTGCTGCTCTGGGTTCCAGGTTCCACTGGTGACAAAACT CACACATGCCCACCG -3’ (SEQ ID NO: 86)
Fc-noXma-GS-R: 5’-GGTCAGCTCATCGCGGGATGGG -3’ (SEQ ID NO: 87)
Fc-noXma-GS-F: 5’-CCCATCCCGCGATGAGCTGACC -3’ (SEQ ID NO: 88)
El cebador rc-secuencia señal de Igκ-F añade un sitio de restricción HindIII al extremo 5' de la molécula, seguido de una secuencia de Kozak (GCCGCCACC) (SEQ ID Nº: 89), seguido de la secuencia señal de la cadena ligera de Igκ de ratón, directamente contigua al principio de la secuencia de Fc (EU nº 221). Los cebadores Fc-noXma-GS-F y -R eliminan el sitio Xmal interno de la secuencia de Fc codificante, usando la degeneración del código genético para preservar la correcta secuencia de aminoácidos. Se llevaron a cabo dos reacciones de PCR de 25 µl con 25 pmoles de tanto rc-secuencia señal de Igκ-F como Fc-noXma-GS-R o Fc-noXma-GS-F y rcFc-R usando el sistema Expand High Fidelity (Boehringer Mannheim, Indianápolis, IN) según el protocolo convencional del fabricante en un ciclador térmico MJ. La primera reacción se llevó a cabo con 500 ng de biblioteca de ADNc de leucocitos (BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA) como molde usando los siguientes ciclos: 94 ºC 2 minutos; 30 ciclos de (94 ºC 30 segundos, 55 ºC 30 segundos, 72 ºC 45 segundos), 72 ºC 10 minutos. La segunda reacción se llevó a cabo con 500 ng de pSYN-Fc-001 como molde (anteriormente) usando los siguientes ciclos: 94 ºC 2 minutos; 16 ciclos de (94 ºC 30 segundos, 58 ºC 30 segundos, 72 ºC 45 segundos), 72 ºC 10 minutos. Las bandas de tamaño esperado (-495 y 299 pb, respectivamente) se purificaron en gel con un kit de extracción en gel (Qiagen, Valencia CA), luego se combinaron en una reacción de PCR con 25 pmoles de cebadores de secuencia señal de rc-Igκ-F y rcFc-R y se ejecutaron como antes, hibridando a 58 ºC y continuando durante 16 ciclos. La banda de tamaño esperado (∼772 pb) se purificó en gel con un kit de extracción en gel (Qiagen, Valencia CA) y se clonó en pGEM T-Easy (Promega, Madison, WI) para producir un plásmido intermedio pSYN-Fc-007 (pGEM T-Easy/sec señal de Igκ-Fc). El casete de la secuencia señal de Igκ-Fc entero se subclonó entonces usando los sitios Hindlll y EcoRI en tanto el vector de expresión de mamífero pEE6.4 (Lonza, Slough, RU) como pcDNA3.1 (Invitrogen, Carlsbad, CA), dependiendo del sistema que fuera a usarse, para generar pSYN-Fc-009 (pEE6.4/sec señal de Igκ-Fc) y pSYN-Fc-015 (pcDNA3/sec señal de Igκ-Fc).
Ejemplo 32: Clonación de la construcción de secuencia señal de Igκ -Fc N297A para la preparación de Fc N297A sin marcar solo
Con el fin de mutar Asn 297 (numeración EU) de Fc a un residuo de Ala se usaron los siguientes cebadores:
N297A-F 5'-GAGCAGTACGCTAGCACGTACCG -3' (SEQ ID Nº: 90)
N297A-R 5'-GGTACGTGCTAGCGTACTGCTCC -3' (SEQ ID Nº: 91)
Se llevaron a cabo dos reacciones de PCR con 25 pmoles de tanto la rc-secuencia señal de Igκ-F y N297A-R o N297A-F y rcFc-R usando el sistema Expand High Fidelity (Boehringer Mannheim, Indianápolis, IN) según el protocolo convencional del fabricante en un ciclador térmico MJ. Ambas reacciones se llevaron a cabo usando 500 ng de pSYN-Fc-007 como molde usando los siguientes ciclos: 94 ºC 2 minutos; 16 ciclos de (94 ºC 30 segundos, 48 ºC 30 segundos, 72 ºC 45 segundos), 72 ºC 10 minutos. Las bandas de tamaño esperado (~319 y 475 pb, respectivamente) se purificaron en gel con un kit de extracción en gel (Qiagen, Valencia CA), luego se combinaron en una reacción de PCR con 25 pmoles de cebadores de rc-secuencia señal de Igκ-F y rcFc-R y se ejecutaron como antes, hibridando a 58 ºC y continuando durante 16 ciclos. La banda de tamaño esperado (~772 pb) se purificó en gel con un kit de extracción en gel (Qiagen, Valencia CA) y se clonó en pGEM T-Easy (Promega, Madison, WI) para producir un plásmido intermedio pSYN-Fc-008 (pGEM T-Easy/sec señal de Igκ-Fc N297A). El casete de la secuencia señal de Igκ-Fc entero solo se subclonó entonces usando los sitios HindIII y EcoRI en tanto el vector de expresión de mamífero pEE6.4 (Lonza, Slough, RU) como pcDNA3.1 (Invitrogen, Carlsbad, CA), dependiendo del sistema que fuera a usarse, para generar pSYN-Fc-010 (pEE6.4/sec señal de Igκ-Fc N297A) y pSYN-Fc-016 (pcDNA3/sec señal de Igκ-Fc N297A).
Estos mismos cebadores de N297A también se usaron con cebadores de rcFc-F y rcFc-R y pSYN-Fc-001 como molde en una reacción de PCR seguido de subclonación como se indica anteriormente para generar pSYN-Fc-002 (pGEM T Easy/Fc N297A).
Ejemplo 33: Clonación de Epo-Fc y Fc en un único plásmido para vectores de doble gen para la preparación de híbridos de monómero-dímero no mutante de Epo-Fc o N297A, y expresión
Una alternativa a transfectar las construcciones de Epo-Fc y Fc en plásmidos separados es clonarlas en un único plásmido, también llamado un vector de doble gen, tal como el usado en el sistema de Lonza Biologics (Slough, RU). El fragmento RsrII/EcoRI de pSYN-Fc-002 se subclonó en los sitios correspondientes en pEE12.4 (Lonza Biologics, Slough, RU) según procedimientos convencionales para generar pSYN-Fc-006 (fragmento pEE12.4/Fc N297A). El plásmido pSYN-EPO-004 se usó como molde para una reacción de PCR usando el cebador de Epo-F del Ejemplo 25 y el siguiente cebador:
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Se llevó a cabo una reacción de PCR usando el sistema Expand High Fidelity (Boehringer Mannheim, Indianápolis, IN) según el protocolo convencional del fabricante en un ciclador térmico MJ como se indica anteriormente, durante 16 ciclos con 55 ºC de temperatura de hibridación. La banda de tamaño esperado (~689 pb) se purificó en gel con un kit de extracción en gel (Qiagen, Valencia CA) y se clonó en pSYN-Fc-006 usando los sitios de restricción HindIII/RsrII, para generar pSYN-EPO-005 (pEE12.4/Epo-Fc N297A). El gen de doble vector para el híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc N297A se construyó entonces clonando el fragmento NotIBamHI de pSYN-Fc-010 en los sitios correspondientes en pSYN-EPO-005 para generar pSYN-EPO-008 (pEE12.4-6.4/Epo-Fc N297A/Fc N297A).
La construcción no mutante también se hizo subclonando la secuencia de Fc no mutante de pSYN-Fc-001 en pSYNEPO-005 usando los sitios RsrII y EcoRI, para generar pSYN-EPO-006 (pEE12.4/Epo-Fc). El gen de doble vector para el híbrido de monómero-dímero de Epo-Fc se construyó entonces clonando el fragmento Notl/BamHI de pSYNFc-009 en los sitios correspondientes en pSYN-EPO-006 para generar pSYN-EPO-007 (pEE1,2.4-6.4/Epo-Fc /Fc).
Cada plásmido se transfectó en células CHOK1SV y clones positivos se identificaron y adaptaron a suspensión libre de suero, como se indica en The Lonza Biologics Manual for Standard Operating procedures (Lonza Biologics, Slough, RU), y se purificó como se indica para las otras construcciones de monómero-dímero.
Ejemplo 34: Clonación de IFN-Fc humano, IFN-Fc N297A con ligantes de ocho aminoácidos yconstrucciones de Igκ-Fc-6His
Se usaron 10 ng de una biblioteca de ADN genómico humano de Clontech (BD Biosciences Clontech, Palo Alto, CA) como molde para aislar IFN humano con su secuencia señal nativa usando los siguientes cebadores:
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El cebador inverso también se usó para crear una secuencia de ligante de ocho aminoácidos (EFAGAAAV) (SEQ ID Nº: 94) en el extremo 3' de la secuencia de IFN humano. La reacción de PCR se llevó a cabo usando el sistema Expand High Fidelity (Boehringer Mannheim, Indianápolis, IN) según el protocolo convencional del fabricante en un ciclador térmico Rapid Cycler (Idaho Technology, Salt Lake City, UT). Un producto de PCR del tamaño correcto (~607 pb) se purificó en gel usando un kit de extracción en gel (Qiagen; Valencia, CA), se clonó en el vector de clonación TA (Promega, Madison, WI) y se secuenció. Esta construcción se llamó pSYN-IFN-002. pSYN-IFN-002 se digirió con Sbfl y SalI y se clonó en pSP72 (Promega) en los sitios Pstl y SalI dando pSYN-IFN-005.
pSYN-Fc-001 purificado (0,6 µg) se digirió con SalI y EcoRI y se clonó en los sitios correspondientes de pSYN-IFN005 para crear el plásmido pSYN-IFN-006 que contiene IFN humano ligado a Fc humano mediante una secuencia de ligante de ocho aminoácidos. pSYN-IFN-006 se digirió entonces con Sbfl y EcoRI y la secuencia de IFN-Fc de longitud completa se clonó en los sitios PstI y EcoRI de pEDdC.señal para crear el plásmido pSYN-IFN-008.
pSYN-Fc-002 que contenía el ADN de Fc humano con un único cambio de aminoácido de asparagina a alanina en la posición 297 (N297A; numeración EU) se digirió con BspEI y Xmal para aislar un fragmento de ADN de ~365 pb que contenía la mutación N297A. Este fragmento de ADN se clonó en los sitios correspondientes en pSYN-IFN-008 para crear el plásmido pSYN-IFN-009 que contenía la secuencia de IFN-Fc con un ligante de ocho aminoácidos y una mutación N297A en Fc en el vector de expresión, pED.dC.
Clonación de la secuencia señal de Igκ-Fc N297A -6His. Se usaron los siguientes cebadores para añadir una marca de 6xHis al extremo C de la secuencia codificante de Fc N297A:
Fc GS-F: 5'-GGCAAGCTTGCCGCCACCATGGAGACAGACACACTCC -3' (SEQ ID Nº: 95)
Fc.6His-R: 5'-TCAGTGGTGATGGTGATGATGTTTACCCGGAGACAGGGAG -3' (SEQ ID Nº: 96)
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(3000 ufp/pocillo) a cada pocillo con la excepción de los pocillos de control. Las placas se incubaron a 37 ºC, 5% de CO2 durante 28 horas. Las células vivas se fijaron con 10% de ácido tricloroacético (TCA) frío y luego se tiñeron con sulforrodamina B (SRB) según protocolos publicados (Rubinstein y col. 1990, J. Natl. Cancer Inst. 82, 1113). El colorante SRB se solubilizó con Tris 10 mM a pH 10,5 y se leyó en un espectrofotómetro a 490 nm. Las muestras se analizaron comparando actividades con una curva patrón conocida que oscila de 10 a 0,199 UI/ml. Los resultados se presentan a continuación en la Tabla 8 y demuestran elevada actividad antiviral de híbridos de monómero-dímero.
TABLA 8: ENSAYO ANTIVIRAL DE INTERFERÓN BETA
HOMODÍMERO FRENTE A HÍBRIDO DE MONÓMERO-DÍMERO
Proteína
Actividad antiviral (UI/nmol) Desv est
Homodímero del ligante de 8 aa de IFN-Fc
4,5 ×105 0,72 × 105
Homodímero del ligante de 8 aa de IFN-Fc N297A
3,21 × 105 0,48 × 105
Híbrido de monómero-dímero del ligante de 8 aa de IFN-Fc N297A: Fc-His
12,2 × 105 2 × 105

Ejemplo 37: Administración de homodímero e híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc con un ligante de ocho aminoácidos a monos cinomolgos
Para administración pulmonar, aerosoles de tanto proteínas de homodímero de IFN-Fc como de híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc N297A (ambas con el ligante de 8 aminoácidos) en PBS, pH 7,4, 0,25% de HSA, se crearon con el nebulizador Aeroneb Pro™ (AeroGen, Mountain View, CA), en línea con un respirador Bird Mark 7A, y se administraron a monos cinomolgos sin tratamiento previo anestesiados mediante tubos endotraqueales (que se aproximan a la respiración tidal normal). Se tomaron muestras de sangre en diversos momentos de tiempo, y la cantidad de proteína que contiene IFN en el suero resultante se cuantificó usando un inmunoensayo de IFN humano (Biosource International, Camarillo, CA). Se calcularon los parámetros farmacocinéticos usando el software WinNonLin. La Tabla 9 presenta los resultados de monos cinomolgos tratados con el híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc N297A u homodímero de IFN-Fc.
TABLA 9: ADMINISTRACIÓN DE HÍBRIDO DE MONÓMERO-DÍMERO DE IFNFC N297A Y HOMODÍMERO DE
IFNFC A MONOS
Proteína
Mono nº Vía Dosis depositada aprox.1 (µg/kg) Cmáx (ng/ml) ABC (h*ng/ml) t1/2(h) t1/2 prom (h)
Híbrido de monómerodímero de IFN-Fc N297A
CO7308 pulm 20 23,3 987,9 27,6 27,1
CO7336
pulm 20 22,4 970,6 25,6
CO7312
pulm 20 21,2 1002,7 28,0
Homodímero de IFN-Fc
CO7326 pulm 20 2,6 94,6 11,1 11,4
CO7338
pulm 20 5,0 150,6 11,7
1 Basado en el 15% de fracción de deposición de dosis nebulizada como se ha determinado por escintigrafía gamma
La farmacocinética de IFN-Fc con un ligante de 8 aminoácidos administrada a monos cinomolgos se presenta en la Figura 15. La figura compara el homodímero de IFN-Fc con el híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc N297A en monos después de la administración de una única dosis pulmonar. Se obtuvieron niveles en suero significativamente mayores en monos tratados con el híbrido de monómero-dímero en comparación con el homodímero.
También se analizaron muestras de suero para niveles de neopterina (un biomarcador de actividad de IFN) usando un inmunoensayo de neopterina (MP Biomedicals, Orangeburg, NY). Los resultados para este análisis se muestran en la Figura 16. La figura compara la estimulación de neopterina en respuesta al homodímero de IFN-Fc y el híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc N297A. Puede observarse que se detectaron niveles de neopterina significativamente mayores en monos tratados con híbrido de monómero-dímero de IFN-Fc N297A con respecto al homodímero de IFN-Fc.
Todos los números que expresan cantidades de componentes, condiciones de reacción, etc., usados en la memoria descriptiva y reivindicaciones deben entenderse como que están modificados en todos los casos por el término “aproximadamente”. Por consiguiente, a menos que se indique lo contrario, los parámetros numéricos expuestos en
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primera cadena comprende una molécula biológicamente activa, y al menos una parte de una región constante de
inmunoglobulina y en donde dicha segunda cadena consiste en al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y opcionalmente una marca de afinidad.
E29. La proteína quimérica de E28, en donde la marca de afinidad es una marca FLAG. E30. Una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadena de polipéptidos, en donde dicha
primera cadena comprende una molécula biológicamente activa, y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y en donde dicha segunda cadena consiste esencialmente en al menos una parte de una región constante de
inmunoglobulina y opcionalmente una marca de afinidad. E31. La proteína quimérica de E30, en donde la marca de afinidad es una marca FLAG. E32. Una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadenas de polipéptidos. a) en donde dicha primera cadena comprende una molécula biológicamente activa, al menos una parte de una
región constante de inmunoglobulina y un primer dominio que tiene al menos un componente de unión específica, y b) en donde dicha segunda cadena comprende al menos una parte de una inmunoglobulina sin una molécula
biológicamente activa o región variable de inmunoglobulina y que además comprende un segundo dominio que es un componente de unión específica de dicho primer dominio. E33. La proteína quimérica de E32, en donde dicha segunda cadena además comprende una marca de afinidad. E34. La proteína quimérica de E33, en donde la marca de afinidad es una marca FLAG. E35. La proteína quimérica de E32, en donde la parte de una inmunoglobulina es un Fragmento de Fc. E36. La proteína quimérica de E32 o 35, en donde la inmunoglobulina es IgG. E37. La proteína quimérica de E35, en donde la parte de una inmunoglobulina es un componente de unión de FcRn. E38. La proteína quimérica de E37, en donde el componente de unión de FcRn es un péptido mimético de un
fragmento de Fc de una inmunoglobulina.
E39. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde el primer dominio se une con el segundo dominio no covalentemente. E40. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde el primer dominio es una mitad de una cremallera de leucina
superenrollada y dicho segundo dominio es el componente de unión complementario de dicha cremallera de leucina superenrollada. E41. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde la molécula biológicamente activa es un péptido. E42. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde la molécula biológicamente activa es interferón. E43. La proteína quimérica de E42, en donde el interferón es interferón α y tiene un ligante de 15-25 aminoácidos. E44. La proteína quimérica de E43, en donde el interferón α tiene un ligante de 15-20 aminoácidos. E45. La proteína quimérica de E41, en donde la molécula biológicamente activa es feuprolida. E46. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde la molécula biológicamente activa es un inhibidor de fusión viral.
E47. La proteína quimérica de E46, en donde el inhibidor de fusión viral es un inhibidor de fusión HIV. E48. La proteína quimérica de E47, en donde el inhibidor de fusión HIV es T20 (SEQ ID NO:1), o T21 (SEQ ID NO:2), o T1249 (SEQ ID NO:3).
E49. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde la molécula biológicamente activa es un factor de coagulación. E50. La proteína quimérica de E49, en donde el factor de coagulación es Factor VII o Factor VIIa. E51. La proteína quimérica de E49, en donde el factor de coagulación es Factor IX. E52. La proteína quimérica de E32 o 37, en donde la molécula biológicamente activa es una molécula pequeña.
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E105. El método de E90, en donde dicha molécula biológicamente activa es eritropoyetina.
E106. Una proteína quimérica de la fórmula X-La-F:F o F:F-La-X
en donde X es una molécula biológicamente activa, L es un ligante, F es al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina y a es cualquier número entero o cero. E107. La proteína quimérica de E106, en donde F es un componente de unión de FcRn. E108. La proteína quimérica de E106, en donde el FcRn es un péptido mimético de un fragmento de Fc de una
inmunoglobulina. E109. La proteína quimérica de E106 o 107, en donde cada F está químicamente asociado con el otro F. E110. El método de E109, en donde la asociación química es una interacción no covalente. E111. El método de E109, en donde el enlace químico es un enlace covalente. E112. El método de E109, en donde el enlace químico es un enlace disulfuro. E113. La proteína quimérica de E106, o 107, en donde F está unido a F mediante un enlace que no es un enlace
disulfuro. E114. La proteína quimérica de E106, en donde F es una región constante de inmunoglobulina IgG. E115. La proteína quimérica de E106, en donde F es una IgG1. E116. La proteína quimérica de E106, en donde F es un Fragmento de Fc. E117. La proteína quimérica de E106, en donde X es un polipéptido E118. La proteína quimérica de E106, en donde X es leuprolida. E119. La proteína quimérica de E106, en donde X es una molécula pequeña. E120. La proteína quimérica de E119, en donde la molécula pequeña es un antagonista de VLA4. E121. La proteína quimérica de E106, en donde X es un inhibidor de fusión viral. E122. La proteína quimérica de E121, en donde el inhibidor de fusión viral es un inhibidor de fusión HIV. E123. La proteína quimérica de E122, en donde el inhibidor de fusión HIV es T20 (SEQ ID NO:1), o T21 (SEQ ID
NO:2), o T1249 (SEQ ID NO:3). E124. La proteína quimérica de E106 o 107, en donde X es un factor de coagulación. E125. La proteína quimérica de E124, en donde el factor de coagulación es Factor VII o VIIa. E126. La proteína quimérica de E124, en donde el factor de coagulación es Factor IX. E127. La proteína quimérica de E106 o 107, en donde X es un ácido nucleico. E128. La proteína quimérica de E127, en donde el ácido nucleico es una molécula de ADN o ARN. E129. La proteína quimérica de E106 o 107, en donde X es un factor de crecimiento. E130. La proteína quimérica de E129, en donde el factor de crecimiento es eritropoyetina. E131. Un método de tratamiento de una enfermedad o afección en un sujeto que comprende administrar la proteína
quimérica de E1, 5, 32, 37, 106, a 107 a dicho sujeto. E132. El método de E131, en donde la enfermedad o afección es una infección vírica. E133. El método de E131, en donde la molécula biológicamente activa es interferón. E134. El método de E133, en donde el interferón es interferón α y tiene un ligante of 15-25 aminoácidos. E135. El método de E134, en donde el interferón α tiene un ligante of 15-20 aminoácidos. E136. El método de E132, en donde la infección vírica es HIV.
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E137. El método de E131, en donde la enfermedad o afección es un trastorno hemorrágico.
E138. El método de E137, en donde el trastorno hemorrágico es hemofilia A.
E139. El método de E137, en donde el trastorno hemorrágico es hemofilia B.
E140. El método de E131, en donde la enfermedad o afección es anemia.
E141. El método de E131, en donde la proteína quimérica se administra por vía intravenosa, intramuscular, subcutánea, oral, bucal, sublingual, nasal, rectal, vaginal, por vía de un aerosol, o ruta pulmonar.
E142. El método de E141, en donde la proteína quimérica se administra vía una ruta pulmonar.
E143. El método de E141, en donde la proteína quimérica se administra oralmente.
E144. El método de E131, en donde la inmunoglobulina es igG.
E145. El método de E131, en donde la parte de una inmunoglobulina es un fragmento de Fc.
E146. Una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadena de polipéptidos unidas entre sí, en donde dicha primera cadena comprende una molécula biológicamente activa y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, y dicha segunda cadena comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina sin la molécula biológicamente activa de la primera cadena y en donde dicha segunda cadena no está unida covalentemente a ninguna molécula que tenga un peso molecular mayor que 2 kD.
E147. La proteína quimérica de E146, en donde la parte de una región constante de inmunoglobulina es un componente de unión de FcRn.
E148. Una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadena de polipéptidos unidas entre sí, en donde dicha primera cadena comprende una molécula biológicamente activa y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, y dicha segunda cadena comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina unida no covalentemente a cualquier otra molécula excepto la parte de una inmunoglobulina de dicha primera cadena de polipéptidos.
E149. La proteína quimérica de E148, en donde la parte de una región constante de inmunoglobulina es un componente de unión de FcRn.
E150. Una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadena de polipéptidos unidas entre sí, en donde dicha primera cadena comprende una molécula biológicamente activa y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, y dicha segunda cadena consiste en al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina.
E151. La proteína quimérica de E150, en donde la parte de una región constante de inmunoglobulina es un componente de unión de FcRn.
E152. Una proteína quimérica que comprende una primera y segunda cadena de polipéptidos unidas entre sí, en donde dicha primera cadena comprende una molécula biológicamente activa y al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina, y dicha segunda cadena comprende al menos una parte de una región constante de inmunoglobulina sin la molécula biológicamente activa de la primera cadena y una molécula con un peso molecular menor de 2 kD unida covalentemente.
E153. La proteína quimérica de E152, en donde la parte de una región constante de inmunoglobulina es un componente de unión de FcRn.
E154. Un método de obtención de una proteína quimérica que comprende un fragmento de Fc de una inmunoglobulina unido a una molécula biológicamente activa, comprendiendo dicho método
a) transfectar una célula con un constructo de ADN que comprende una secuencia de ADN que codifica un fragmento de Fc de una inmunoglobulina y una segunda secuencia de ADN que codifica inteína;
b) cultivar dicha célula en condiciones tales que se expresan el fragmento de Fc y la inteína;
c) aislar dicho fragmento de Fc e inteína de dicha célula;
d) sintetizar químicamente una molécula biológicamente activa que tiene un Cys N terminal;
e) hacer reaccionar la inteína aislada Fc de c) con MESNA para generar un tio-éster C terminal;
f) hacer reaccionar la molécula biológicamente activa de d) con el Fc de e) para obtener una proteína quimérica que comprende un Fc unido a una molécula biológicamente activa.
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