PL211512B1 - Sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich - Google Patents

Sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich

Info

Publication number
PL211512B1
PL211512B1 PL355853A PL35585300A PL211512B1 PL 211512 B1 PL211512 B1 PL 211512B1 PL 355853 A PL355853 A PL 355853A PL 35585300 A PL35585300 A PL 35585300A PL 211512 B1 PL211512 B1 PL 211512B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
sperm
sample
extender
frozen
tris
Prior art date
Application number
PL355853A
Other languages
English (en)
Other versions
PL355853A1 (pl
Inventor
John Schenk
Original Assignee
Xy Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=26863156&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL211512(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Xy Inc filed Critical Xy Inc
Publication of PL355853A1 publication Critical patent/PL355853A1/pl
Publication of PL211512B1 publication Critical patent/PL211512B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0215Disinfecting agents, e.g. antimicrobials for preserving living parts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0221Freeze-process protecting agents, i.e. substances protecting cells from effects of the physical process, e.g. cryoprotectants, osmolarity regulators like oncotic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01NPRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02Preservation of living parts
    • A01N1/0205Chemical aspects
    • A01N1/021Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0226Physiologically active agents, i.e. substances affecting physiological processes of cells and tissue to be preserved, e.g. anti-oxidants or nutrients
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61DVETERINARY INSTRUMENTS, IMPLEMENTS, TOOLS, OR METHODS
    • A61D19/00Instruments or methods for reproduction or fertilisation
    • A61D19/02Instruments or methods for reproduction or fertilisation for artificial insemination
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0608Germ cells
    • C12N5/061Sperm cells, spermatogonia

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

(21) Numer zgłoszenia: 355853 (51) Int.Cl.
(22) Data zgłoszenia: 22.11.2000 A01N 1/02 (2006.01)
Urząd Patentowy Rzeczypospolitej Polskiej (86) Data i numer zgłoszenia międzynarodowego:
22.11.2000, PCT/US00/030155 (87) Data i numer publikacji zgłoszenia międzynarodowego:
31.05.2001, WO01/37655
Opis patentowy przedrukowano ze względu na zauważone błędy (54) Sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich (30) Pierwszeństwo:
24.11.1999, US, 60/167,423 05.01.2000, US, 09/478,299 (43) Zgłoszenie ogłoszono:
31.05.2004 BUP 11/04 (45) O udzieleniu patentu ogłoszono:
31.05.2012 WUP 05/12 (73) Uprawniony z patentu:
XY, LLC, Navasota, US (72) Twórca(y) wynalazku:
JOHN SCHENK, Fort Collins, US (74) Pełnomocnik:
rzecz. pat. Janina Kossowska
PL 211 512 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób kriokonserwacji plemników, z wyłączeniem plemników ludzkich.
Wynalazek jest przydatny do konserwacji plemników selekcjonowanych według płci.
Ponad pół wieku temu w Stanach Zjednoczonych wprowadzono sztuczną inseminację jako narzędzie w hodowli komercyjnej różnych gatunków ssaków. Chociaż sztuczna inseminacja była początkowo ograniczona do regionów stosunkowo bliskich miejscu zbiórki nasienia, postępy w kriokonserwacji i przechowywaniu nasienia ułatwiły szeroką dystrybucję i handel nasieniem przeznaczonym do sztucznej inseminacji lub zapłodnienia in vitro.
Dalsze udoskonalenia w zbiórce nasienia ssaków, selekcji, kriokonserwacji, przechowywaniu i metodach manipulowania zwiększyły możliwości hodowców w produkcji zwierząt mających pożądane cechy. Na przykład, postęp w selekcji nasienia ssaków, opartej na nieznacznych różnicach we właściwościach fizycznych, umożliwiły rozdzielenie plemników według płci, to jest, selekcję komórek zawierających albo chromosom X, albo chromosom Y. Ta technika pozwala hodowcy na manipulowanie odpowiednim procentem plemników X lub Y w próbce, a przez to decydowanie o płci potomstwa. Możliwość selekcji plemników według płci lub jakiekolwiek innej pożądanej cechy dostarcza ważnego narzędzia do przyspieszania postępu genetycznego, wzrostu wydajności produkcji i osiągania większej zdolności przystosowawczej w umiejętnym obchodzeniu się z żywym inwentarzem. Pełne wykorzystanie tego narzędzia zależy jednak od możliwości mrożenia i przechowywania selekcjonowanych plemników.
Do selekcji komórek są dopuszczalne różne sposoby; jednak selekcja i dalsza obróbka plemników stanowi wyjątkowe wyzwanie, ponieważ plemniki nie są zdolne do naprawy DNA oraz ze względu na morfologię plemnika. Każdy plemnik ma pokrywający główkę akrosom i witkę, które są ważne dla płodności i stosunkowo łatwo ulegają uszkodzeniu. Ponadto zdolność plemników do zapłodnienia maleje z czasem upływającym między zbiórką a zastosowaniem. Ponieważ większość dostępnych sposobów selekcji wiąże się z fizycznymi stresami i jest czasochłonnych, wyselekcjonowane plemniki są zwykle do pewnego stopnia upośledzone w porównaniu z komórkami nie selekcjonowanymi. Zdolność do zapłodnienia może ulec dalszemu zmniejszeniu, jeżeli technika selekcji wiąże się ze znacznym rozrzedzeniem. Sugerowano, że ten „efekt rozrzedzenia” może być spowodowany utratą składników ochronnych w plazmie nasienia.
Cytometria przepływowa jest szczególnie efektywnym sposobem selekcji, którym można posłużyć się do sortowania plemników według płci. Jednak sortowane plemniki są poddane dodatkowym stresom poza tymi, które normalnie spotyka się w protokołach standardowej sztucznej inseminacji i zapłodnienia in vitro. W szczególności, cytometria przepływowa jest czasochłonna i ze względu na fizyczne ograniczenia cytometrów przepływowych, plemniki do sortowania muszą być rozrzedzane do 56 poziomów, które nie są optymalne do przechowywania (zwykle rzędu 105-106/ml). Ponadto, sortowane plemniki przeznaczone do sztucznej inseminacji muszą być zagęszczone tak, aby można było zastosować konwencjonalne pakowanie i sprzęt dostarczający. Potrzeba etapu zagęszczania wystawia zatem już do pewnego stopnia upośledzone plemniki na dodatkowe stresy fizyczne.
Mrożenie plemników również niezmiennie zmniejsza ich zdolność do zapłodnienia, ich ruchliwość i/lub żywotność i chociaż sposoby mrożenia nie selekcjonowanych plemników są dobrze znane, nie opisano techniki do kriokonserwowania selekcjonowanych plemników.
W opisie patentowym USA nr 4 474 875 opisano sposób rozdzielania plemników w ciekłym ośrodku rozdzielającym z jednolitym gradientem gęstości, dzięki któremu siły wyporu miały tendencję do oddzielania plemników niosących chromosom X od plemników niosących chromosom Y w kolumnie z gradientem gęstości. Plemniki można pobrać z kolumny z populacji na górze i na dole z różnymi charakterystykami płci. Jak ujawniono w tym opisie patentowym zamrażanie prowadzi się w zhomogenizowanym mleku ze stopniowym zwiększaniem zawartości glicerolu.
Publikacja WO 99/33956 dotyczy sposobu sztucznej inseminacji ssaków niską dawką seksowanych plemników. Plemniki do takiej inseminacji przygotowuje się przez sortowanie ich według płci i wprowadzenie seksowanych plemników do macicy samicy w ilości mniejszej niż w typowym sztucznym zapłodnieniu. Zapłodnienie zwykle przeprowadza się w ciągu około 29 godzin po sortowaniu plemników. Sposób ten nie obejmuje zatem etapu mrożenia sortowanych plemników ani dodawania do nich rozcieńczalników.
PL 211 512 B1
W cytowanej publikacji WO ujawniono ponadto ulepszony układ do cytometrii przepływowej, który pozwala na poprawienie żywotności plemników sortowanych z jego użyciem oraz sposób sortowania plemników.
Niniejszy wynalazek dotyczy sposobu konserwowania plemników przy zastosowaniu niskich temperatur. Sposób ten jest szczególnie przydatny w kriokonserwacji plemników, ponieważ obejmuje izolowanie plemników z próbki selekcjonowanych plemników, następnie dodanie końcowego rozcieńczalnika do wyizolowanych plemników w celu wytworzenia zawiesiny mającej żądane stężenie plemników.
Według wynalazku sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich obejmuje:
(a) otrzymywanie próbki plemników z wyłączeniem plemników ludzkich;
(b) dodawanie do próbki plemników początkowego rozcieńczalnika obejmującego fizjologiczne dopuszczalny nośnik i jeden lub więcej z następujących składników:
i) składnik, który utrzymuje osmolalność i buforuje pH;
ii) substancję organiczną, która zmniejsza udar chłodowy i zabezpiecza płodność plemników;
iii) źródło energii, iv) substancję, która ułatwia kapacytację plemników; i
v) antybiotyk, selekcjonowanie plemników metodą cytometrii przepływowej, z wytworzeniem próbki selekcjonowanych plemników, przy czym plemniki są selekcjonowane według płci, a etapy dodawania i selekcjonowania przeprowadza się w dowolnej kolejności;
(c) ochłodzenie próbki selekcjonowanych plemników do temperatury 22°C do 5°C przez okres 60 do 240 minut;
(d) izolowanie plemników ze schłodzonej próbki selekcjonowanych plemników z uzyskaniem schłodzonych izolowanych plemników;
(e) dodawanie końcowego rozcieńczalnika obejmującego oprócz fizjologicznie dopuszczalnego nośnika i krioprotektanta jeden lub więcej z następujących składników:
i) składnik, który utrzymuje osmolalność i buforuje pH;
ii) substancję organiczną, która zmniejsza udar chłodowy i zabezpiecza płodność plemników;
iii) źródło energii, iv) substancję, która ułatwia kapacytację plemników; i
v) antybiotyk, do schłodzonych, izolowanych plemników z wytwarzaniem schłodzonej zawiesiny plemników o stężeniu komórek plemników od 1 miliona na mililitr rozcieńczalnika do 300 milionów na mililitr rozcieńczalnika; i (f) mrożenie schłodzonej zawiesiny plemników w temperaturze od 5°C do -100°C.
Korzystnie, w tym sposobie jako próbkę selekcjonowanych plemników stosuje się nasienie ssaka, korzystnie wołu, konia lub świni.
Korzystnie, krioprotektant stosowany w etapie e) sposobu jest wybrany z grupy składającej się z dicukrów, tricukrów i dowolnej ich kombinacji lub glicerolu, dimetylosulfotlenku, glikolu etylenowego, glikolu propylenowego i dowolnej ich kombinacji.
Korzystnie, składnik utrzymujący osmolalność i buforujący pH jest wybrany z grupy składającej się z buforu, którym jest sól, buforu zawierającego węglowodan i dowolnej ich kombinacji lub jest wybrany z grupy składającej się z cytrynianu sodu, Tris[hydroksymetylo]aminometanu, kwasu N-Tris[hydroksymetylo]metylo-2-aminoetanosulfonowego, glutaminianu sodu, mleka, podłoża buforowanego HEPES i dowolnej ich kombinacji.
Korzystnie, substancja organiczna jest wybrana z grupy składającej się z żółtka jaja, ekstraktu z żółtka jaja, mleka, ekstraktu z mleka, kazeiny, albuminy, lecytyny i dowolnej ich kombinacji.
Korzystnie, źródłem energii jest monosacharyd wybrany z grupy składającej się z glukozy, fruktozy, mannozy i dowolnej ich kombinacji.
Korzystnie, antybiotyk jest wybrany z grupy składającej się z tylozyny, gentamycyny, linkomycyny, linkospektyny, spektynomycyny, penicyliny, streptomycyny i dowolnej ich kombinacji.
Korzystnie, w sposobie po dodaniu końcowego rozcieńczalnika próbka plemników i zawiesina plemników obejmuje odpowiednio glicerol, cytrynian sodu, Tris[hydroksymetylo]aminometan, żółtko jaja, fruktozę i jeden lub więcej antybiotyków.
PL 211 512 B1
Korzystnie, po dodaniu końcowego rozcieńczalnika próbka plemników i zawiesina plemników, każda, obejmuje glicerol, cytrynian sodu, żółtko jaja i jeden lub więcej antybiotyków.
Korzystnie, rozcieńczalnik ma pH w zakresie 6,5 do 7,5.
Korzystnie, plemniki są izolowane z próbki selekcjonowanych plemników przez wirowanie, które korzystnie umożliwia co najmniej 50% do 90% odzysk plemników.
Wynalazek umożliwia kriokonserwację selekcjonowanych według płci plemników, ułatwiającą przechowywanie i/lub ekspedycję próbek selekcjonowanych plemników do miejsc odległych od miejsca zbiórki. Po rozmrożeniu uzyskuje się żywotne plemniki, które można zastosować w procedurach, takich jak sztuczna inseminacja („Al”) i zapłodnienie in vitro („IVF”). Wynik ten był nieoczekiwany z uwagi na dobrze udokumentowaną delikatność plemników. Wcześniej badacze wykazali, że stresy towarzyszące różnym sposobom selekcji lub kriokonserwacji powodowały znaczną utratę płodności i/lub żywotności. Twórcy niniejszego wynalazku wykazali po raz pierwszy, że można osiągnąć ciąże stosując selekcjonowane, a następnie zamrożone plemniki.
Wynalazek stanowi istotny postęp w hodowaniu żywego inwentarza, gdzie selekcjonowanie nasienia do stosowania w takich procedurach może być zastosowane do zwiększenia produkcji potomstwa mającego pożądane cechy. Na przykład, selekcjonowanie w celu otrzymania plemników zawierających albo chromosom X albo Y, umożliwia kontrolowanie płci potomstwa, co jest korzystne dla hodowców zwierząt, takich jak bydło mleczne lub bydło mięsne. Selekcjonowanie według płci znajduje również zastosowanie w hodowli zwierząt wartościowych (np. koni wystawowych lub wyścigowych) lub zwierząt zagrożonych wymarciem. Mrożenie selekcjonowanych plemników, które umożliwia niniejszy wynalazek, pozwoli na szerokie zastosowanie takich sposobów selekcji w celu np. zwiększania wydajności hodowli żywego inwentarza, jak również jakości.
Stosowane tu określenie „akrosom” lub „akrosomalna czapeczka” odnosi się do czapeczki, która pokrywa przednią połowę główki plemnika i która zawiera enzymy niezbędne do penetracji komórki jajowej.
Określenie „według płci” odnosi się do rodzaju chromosomu płciowego obecnego w plemniku (tj. chromosomu X lub Y).
Określenie „kapacytacja” odnosi się do specyficznych zmian zachodzących w plemniku, mających na celu rozwinięcie zdolności do zapłodnienia komórki jajowej, takich jak zmiany enzymatyczne na powierzchni akrosomu, które prowadzą do uwalniania enzymów akrosomalnych ułatwiających penetrację plemnika do komórki jajowej.
Stosowane w odniesieniu do plemnika określenie „krioprotektant” odnosi się do cząsteczki, która chroni plemnik podczas cyklu mrożenia-rozmrażania, sprzyjając przeżyciu i zachowaniu zdolności do zapłodnienia.
Określenie „efekt rozrzedzenia” odnosi się do szybkiego spadku ruchliwości i/lub żywotności plemników w warunkach wysokiego rozrzedzenia.
Stosowane tu określenie „selekcjonowanie” odnosi się do sposobu, jakim próbka jest podzielona w oparciu o obecność lub brak specyficznej właściwości. Zatem „próbka selekcjonowanych plemników” jest próbką otrzymaną przez poddanie próbki źródłowej selekcjonowaniu ze względu na specyficzną właściwość. Próbka selekcjonowanych plemników jest zatem wzbogacona, w stosunku do próbki źródłowej, w plemniki mające specyficzną właściwość.
Określenie „sortowanie” jest tu stosowane do opisania sposobu selekcji przeprowadzanego z zastosowaniem fluorescencyjnie aktywowanego sortera komórek (FACS).
Określenie „rozcieńczalnik” odnosi się do jakiegokolwiek ośrodka, który przyczynia się do konserwowania żywotności plemników.
Określenie „rozrzedzenie” odnosi się do rozrzedzenia plemników rozcieńczalnikiem.
Określenie „początkowy rozcieńczalnik” odnosi się do ośrodka stosowanego do rozrzedzenia plemników przed etapem izolowania w sposobie według wynalazku.
Określenie „końcowy rozcieńczalnik” odnosi się do ośrodka stosowanego do rozrzedzenia plemników przed etapem mrożenia w sposobie według wynalazku.
„Substancja organiczna” w opisanym tu rozcieńczalniku jest jakąkolwiek substancją organiczną, która przyczynia się do zmniejszenia udaru chłodowego i konserwuje płodność plemników.
„Źródłem energii” w opisanym tu rozcieńczalniku jest jakakolwiek substancja organiczna lub substrat, który może być wykorzystywany przez plemnik do utrzymania procesów komórkowych i/lub ruchliwości.
PL 211 512 B1
Stosowane tu określenie „osmolalność” jest miarą ciśnienia osmotycznego cząstek rozpuszczonej substancji w roztworze wodnym (np. rozcieńczalniku). Cząstki rozpuszczonej substancji obejmują zarówno jony, jak i cząsteczki niezjonizowane. Osmolalność jest wyrażona jako stężenie osmotycznie aktywnych cząstek (tj. osmoli) rozpuszczonych w 1 kg wody.
Otrzymywanie próbki selekcjonowanych plemników
Zgodnie ze sposobem według wynalazku mogą być selekcjonowane i mrożone plemniki jakiegokolwiek gatunku. Sposób można przeprowadzić z plemnikami zwierząt domowych, szczególnie żywego inwentarza, jak również z plemnikami dzikich zwierząt (np. gatunków zagrożonych).
Korzystnie, próbka selekcjonowanych plemników zawiera plemniki ssaków. Szczególnie korzystne są plemniki bydlęce, końskie, świńskie, owcze, łosia i bizona.
Ejakulat, z którego otrzymuje się plemniki ma zwykle co najmniej około 50%, a korzystnie co najmniej około 75% plemników o prawidłowej morfologii. W tych wykonaniach na ogół co najmniej około 40%, a korzystnie co najmniej około 60% plemników w ejakulacie wykazuje ruchliwość postępową.
Cytometria przepływowa, którą stosuje się do selekcjonowania plemników w sposobie według wynalazku, jest korzystnym sposobem oddzielania komórek z mieszanych populacji w oparciu o barwienie różnicowe barwnikami fluorescencyjnymi lub wiązanie ze znakowanymi fluorescencyjnie cząsteczkami, takimi jak przeciwciała lub kwasy nukleinowe. We fluorescencyjnie aktywowanym sortowaniu komórek („FACS”) komórki są „sortowane” do różnych populacji w oparciu o fluorescencyjną intensywność po napromienieniu. FACS można stosować do selekcjonowania plemników według płci, ponieważ chromosom X zawiera nieznacznie więcej DNA niż chromosom Y. Gdy plemniki są barwione fluorescencyjnym barwnikiem wiążącym DNA, plemnik niosący chromosom X absorbuje więcej barwnika niż plemnik niosący chromosom Y, a zatem te dwie populacje mogą być rozdzielane za pomocą FACS. Strategię tę omówiono w opisie patentowym US nr 4 362 246 i znacznie rozwinięto w opisie patentowym US nr 5 135 759 (wydanym Johnsonowi). Rozdzielanie wspomagano przez stosowanie ®, cytometrów przepływowych o wysokiej szybkości przepływu, takich jak cytometr przepływowy MoFlo®, produkowany przez Cytomation, Inc. (Ft Collins, CO) i opisany w opisach patentowych US nr nr 5 150 313, 5 602 039, 5 602 349 i 5 643 796, jak również w publikacji PCT nr WO 96/12171.
Sposób selekcjonowania stosowany do otrzymywania próbki selekcjonowanych plemników jest korzystnie sposobem, w którym zachowana jest żywotność plemników. Z powodu nietrwałości plemników zwykłe metody cytometrii przepływowych powinny być na ogół modyfikowane, gdy są stosowane do sortowania plemników. Bardziej konkretnie, cytometria przepływowa wymaga barwienia, rozcieńczania i poddawania komórek działaniu światła. Wszystkie te etapy stanowią stresy, które mogą zmniejszać żywotność plemników. Wrażliwość plemników na te stresy może różnić się między gatunkami, a nawet między osobnikami jednego gatunku. Takie wrażliwości albo są udokumentowane, albo można je z łatwością określić przez badania empiryczne, takie jak te opisane w przykładach 1-5.
Modyfikacje, które zwiększają żywotność, opisano w publikacjach patentowych omawianych powyżej. Na przykład, procedury dostarczające lepszą osłonę i układy kolektora dla sortowanych plemników ujawniono w publikacji PCT nr WO 99/33956 (zgłoszenie nr PCT/US98/27909). Dalej, w przykładach 1-7 poniżej opisano przykładowe procedury barwienia i sortowania plemników. W przykładzie 3 opisano badanie wpływu natężenia lasera i stężenia barwnika na ruchliwość sortowanych, mrożonych plemników po rozmrożeniu. Badanie to wskazuje, że stosowanie niższych natężeń lasera podczas sortowania może zwiększać ruchliwość po rozmrożeniu.
Próbka selekcjonowanych plemników może zawierać oprócz plemników różne składniki i będzie często zawierać składniki dodane w celu ochrony plemników podczas procesu selekcjonowania. W przypadku FACS próbka selekcjonowanych plemników może zawierać składnik(i) roztworów stosowanych do barwienia i sortowania (np. płyn osłaniający i bufor wychwytujący).
Ponadto, próbka selekcjonowanych plemników zawiera zwykle rozcieńczalnik lub frakcję rozcieńczalnika. Na przykład dobrze znane są „dwuetapowe” rozcieńczalniki, obejmujące „frakcję A” nie zawierającą glicerolu i „frakcję B” zawierającą glicerol. Jako pierwszą dodaje się do plemników frakcję A, następnie dodaje się równą objętość frakcji B. Na tym etapie frakcję B często rozdziela się na co najmniej dwie równe objętości i dodaje kolejno, np. drugą objętość frakcji B dodaje się 15 minut po pierwszej.
Jeżeli składniki rozcieńczalnika są nieobecne, rozcieńczalnik lub frakcję rozcieńczalnika dodaje się zwykle do próbki selekcjonowanych plemników przed wyizolowaniem plemników z próbki. Jeśli tylko pewne składniki rozcieńczalnika są obecne, mogą być dodane ewentualnie dodatkowe składniki tak, że próbka selekcjonowanych plemników obejmuje kompletny rozcieńczalnik lub frakcję rozcień6
PL 211 512 B1 czalnika przed etapem izolowania. W przykładowych wykonaniach, plemniki bydlęce są sortowane przepływowo tak, żeby wytworzyć próbkę selekcjonowanych plemników obejmującej frakcję A rozcieńczalnika (patrz przykłady 2, 3 i 4). W razie potrzeby można następnie do próbki selekcjonowanych plemników dodać frakcję B przed etapem izolowania (patrz przykład 5). Rozcieńczalnik (lub frakcja rozcieńczalnika) sprzed etapu izolowania jest określany jako „rozcieńczalnik początkowy” w celu odróżnienia od „rozcieńczalnika końcowego” stosowanego do rozrzedzania izolowanych plemników przed zamrożeniem. Jeśli próbka selekcjonowanych plemników była selekcjonowana metodą FACS, początkowy rozcieńczalnik można dopasować do płynu osłaniającego stosowanego do sortowania. Przykładowe dopasowane płyny osłaniające i rozcieńczalniki opisano szczegółowo w przykładzie 4.
Rozcieńczalnik odpowiedni do zastosowania w próbce selekcjonowanych plemników zawiera fizjologicznie dopuszczalny nośnik. Fizjologicznie dopuszczalny nośnik jest zwykle wodny, a w korzystnych wykonaniach obejmuje dejonizowaną wodę. Odpowiednie rozcieńczalniki zwykle obejmują jeden lub więcej z następujących składników dodatkowych: krioprotektant, składnik utrzymujący osmolalność i buforujący pH, substancję organiczną zapobiegającą udarowi chłodowemu i zabezpieczającą zdolność nasienia do zapłodnienia, źródło energii, które może być łatwo wykorzystane przez plemniki, substancja ułatwiająca kapacytację plemników i jeden lub więcej antybiotyków.
Chociaż krioprotektanty przydatne w sposobie według wynalazku nie są ograniczone do tych działających przez konkretny mechanizm, to większość konwencjonalnych czynników krioprotekcyjnych działa, co najmniej częściowo, przez zmniejszanie wewnątrzkomórkowej utraty wody. Konkretnie, z zamrażaniem wiąże się wzrost stężenia rozpuszczonej substancji w ośrodku otaczającym plemniki. Ten wzrost stężenia rozpuszczonej substancji wyciąga wodę z komórek na zewnątrz, co zwiększa wewnątrzkomórkowe stężenie elektrolitów. Przykładowe krioprotektanty obejmują glicerol, dimetylosulfotlenek, glikol etylenowy, glikol propylenowy i tym podobne. Krioprotektant odpowiedni do zastosowania w danym rozcieńczalniku może różnić się zależnie od gatunków, od których pochodzą plemniki. Na przykład, glicerol jest odpowiedni do zastosowania w kriokonserwacji plemników bydlęcych, ale generalnie nie stosuje się go do kriokonserwacji plemników świńskich lub króliczych. Takie preferencje są dobrze znane dla plemników wartościowych komercyjnie i mogą być łatwo określone empirycznie dla innych rodzajów plemników.
Rozcieńczalnik użyteczny w sposobie według wynalazku obejmuje ewentualnie jeden lub więcej składników, które pomagają w utrzymaniu osmolalności i zapewniają zdolność buforową. W korzystnych wykonaniach wynalazku osmolalność rozcieńczalnika jest zbliżona do osmolalności płynów fizjologicznych. Korzystniej, osmolalność rozcieńczalnika jest w zakresie około 280 mOsm do około 320 mOsm. Korzystnie, pH jest również w fizjologicznie dopuszczalnym zakresie, bardziej korzystnie w zakresie około 6,5 do około 7,5.
Substancje pomocne w utrzymaniu osmolalności i pH w tych zakresach są dobrze znane w dziedzinie i mogą być dodane do rozcieńczalnika jako ciało stałe lub już w roztworze. W tym celu można zastosować bufor zawierający sól, węglowodan lub ich kombinację. Konkretne przykłady buforów obejmują cytrynian sodu, Tris[hydroksymetylo]aminometan i TES (kwas N-Tris[hydroksymetylo]metylo-2-aminoetanosulfonowy) i glutaminian sodu; mleko; ośrodek buforowany HEPES; i jakąkolwiek ich kombinację. Składnik pomocny w utrzymywaniu osmolalności i zapewniający pojemność buforową w konkretnym zastosowaniu może różnić się w zależności od innych składników rozcieńczalnika, a w pewnych przypadkach od gatunku, od którego pochodzą plemniki. Jednak wybór takiego składnika do zastosowania w sposobie według wynalazku leży w zakresie umiejętności specjalisty w dziedzinie.
W rozcieńczalniku może być również zawarta jedna lub więcej substancji organicznych, chroniących przed udarem chłodowym i pozwalających zachować zdolność nasienia do zapłodnienia. Takie substancje są dobrze znane i czasami opisywane jako „nie penetrujące krioprotektanty”. Specjalista w dziedzinie może bez trudu określić substancję organiczną odpowiednią dla konkretnego zastosowania opisanego tu sposobu kriokonserwacji. Na przykład, w rozcieńczalniku mogą być zawarte substancje organiczne, obejmujące składniki ochronne, (np. lipoproteiny, fosfolipidy, lecytynę), które, jak uważa się, zmniejszają wpływ udaru chłodowego i efekt rozrzedzenia. Odpowiednie substancje organiczne obejmują dicukry, tricukry i jakąkolwiek ich kombinację. Substancje organiczne, przykładowo, obejmują żółtko jaja, wyciąg z żółtka jaja, mleko, wyciąg z mleka, kazeinę, albuminę, lecytynę, cholesterol i jakąkolwiek ich kombinację.
Rozcieńczalnik może również zawierać detergent. Doniesiono o synergistycznym działaniu alkilowych detergentów jonowych, takich jak dodecylosiarczan sodu (SDS) z żółtkiem jaja w zwiększaniu
PL 211 512 B1 ochrony przed udarem chłodowym. W rozcieńczalniku mogą być zastosowane również inne detergenty przydatne w kriokonserwacji komórek, a wybór konkretnego detergentu dla konkretnego zastosowania w świetle dostarczonych tu informacji jest w zakresie umiejętności specjalisty w dziedzinie, patrz np. przykład 5.
Korzystnie, rozcieńczalnik zawiera źródło energii, które jest łatwe do wykorzystania przez plemniki. Przy braku źródła energii plemniki mogą utleniać wewnątrzkomórkowe fosfolipidy i inne składniki komórkowe. Zatem obecność źródła energii w rozcieńczalniku chroni wewnątrzkomórkowe rezerwy i komórkowe składniki. Jak dobrze wiadomo w dziedzinie, cukry, szczególnie monosacharydy, dostarczają dogodnego źródła energii, chociaż w rozcieńczalniku może być zastosowane jakiekolwiek konwencjonalne źródło energii. Przykładowe monosacharydy użyteczne w rozcieńczalniku obejmują glukozę, fruktozę i/lub mannozę.
W rozcieńczalniku może być ewentualnie zawarty jeden lub więcej przeciwutleniaczy w celu dostarczenia dodatkowej ochrony przed udarem chłodowym. Przykładowe przeciwutleniacze obejmują butylowany hydroksytoluen (BHT), jego pochodne i tym podobne. Jednak w rozcieńczalniku mogą być zastosowane inne przeciwutleniacze przydatne w kriokonserwacji komórek, a wybór konkretnego przeciwutleniacza dla konkretnego zastosowania jest w zakresie umiejętności specjalisty w dziedzinie w świetle dostarczonych tu informacji.
Rozcieńczalnik może zawierać również substancję ułatwiającą kapacytację plemników. Różne czynniki ułatwiające kapacytację są znane w dziedzinie i mogą być wykorzystywane w rozcieńczalniku. Przykłady obejmują enzymy, takie jak alfa-amylaza, beta-amylaza, beta-glukuronidaza, które w razie potrzeby mogą być zastosowane w kombinacji.
Wreszcie, rozcieńczalnik korzystnie zawiera antybiotyk, ponieważ znaczny wzrost bakteryjny może zagrażać żywotności plemników i zwiększać ryzyko infekcji gospodarza podczas sztucznej inseminacji lub procedur zapłodnienia in vitro. W rozcieńczalniku również mogą być wykorzystywane różne antybiotyki przydatne w kriokonserwacji komórek. Wybór odpowiedniego antybiotyku zależy od gatunków, z których otrzymano plemniki, od procedur związanych z otrzymywaniem i manipulacją próbką plemników i od konkretnego mikroorganizmu (mikroorganizmów). Przykładowe antybiotyki obejmują tylozynę, gentamycynę, linkomycynę, spektynomycynę, linkospektynę (kombinacja linkomycyny i spektynomycyny), penicylinę, streptomycynę i tikarcylinę, które można stosować same lub w kombinacji. Jednak specjalista w dziedzinie może łatwo określić inne antybiotyki odpowiednie do zastosowania w rozcieńczalniku.
Przykładowe rozcieńczalniki omówiono bardziej szczegółowo poniżej i w przykładach.
Stężenie plemników jest zwykle niższe w selekcjonowanej próbce plemników niż w próbce źródłowej i jak wskazywano powyżej, gdy stosuje się FACS, rozrzedzenie jest znaczące. Przez zwykłe 5 sortowanie według płci można wytworzyć próbkę zawierającą plemniki w ilości 6 x 105 komórek/ml buforu wychwytującego. Ponieważ tak niskie stężenie nie jest optymalne dla przechowywania (przynajmniej dla większości badanych gatunków), w sposobie kriokonserwacji według wynalazku na ogół zagęszcza się próbkę selekcjonowanych plemników.
Chłodzenie próbki selekcjonowanych plemników
Trzeci etap sposobu kriokonserwacji wymaga chłodzenia próbki selekcjonowanych plemników, zwykle przez zmniejszanie temperatury z kontrolowaną szybkością. Zbyt szybkie chłodzenie może wywołać udar chłodowy, który może być przyczyną utraty integralności błony komórkowej i funkcji komórki. Intensywność działań wywołanych udarem chłodowym różni się u różnych gatunków i zależy od czynników, takich jak szybkość chłodzenia i zakres temperatury. W warunkach odpowiedniego kontrolowanego chłodzenia, plemniki są zdolne do adaptacji do czynników termicznych. W przykładzie 2 między innymi opisano warunki chłodzenia plemników bydlęcych, a określenie odpowiednich warunków chłodzenia plemników innych gatunków jest w zakresie umiejętności specjalistów w dziedzinie.
W korzystnym wykonaniu wynalazku próbka selekcjonowanych plemników jest schładzana do temperatury od 22°C do 5°C i ochładzanie jest prowadzone przez okres 60 minut do 24 godzin, korzystnie przez okres około 90 minut do 240 minut i korzystniej przez okres około 90 minut do około 120 minut. Chłodzenie można przeprowadzić jakimkolwiek dogodnym sposobem, obejmującym zwykłe umieszczenie próbki selekcjonowanych plemników w otoczeniu o temperaturze 5°C.
Izolacja komórek plemników z próbki selekcjonowanych plemników
Po początkowym rozcieńczeniu próbki selekcjonowanych plemników, plemniki izolowano z próbki stosując dowolny wystarczająco delikatny sposób izolacji, dostarczający przynajmniej około 50% odzysku plemników, korzystniej około 75% do około 90% odzysku plemników i najkorzystniej
PL 211 512 B1 około 80% do około 90% odzysku plemników. Podczas etapu izolacji schłodzone plemniki powinno być generalnie przetrzymywane w chłodzie, tj. między około 1 a około 8°C i korzystnie blisko 4 lub 5°C.
Do izolowania plemników może być stosowany dowolny z różnorodnych sposobów, odpowiedni do odzyskiwania komórek z zawiesiny, w tym, na przykład, filtracja, sedymentacja i wirowanie. W przykładowym korzystnym wykonaniu próbkę selekcjonowanych plemników rozdziela się do 50 ml probówek w równych objętościach nie przekraczających około 27 ml, a korzystnie około 20-27 ml. Wirowanie prowadzi się w około 4°C przy około 850 x g przez 20 minut. Korzystnie, etap wirowania daje przynajmniej około 50% do około 90% odzysku plemników, korzystniej około 60% do około 90% odzysku plemników i najkorzystniej około 70% do około 90% odzysku plemników. Po izolacji supernatant usuwa się, a osad zawiesza się delikatnie worteksując lub powtarzając aspirację przy 4°C. Wtedy zwykle określa się stężenie plemników (np. z zastosowaniem hemacytometru).
Końcowe rozcieńczanie izolowanych komórek plemników
Po izolacji plemniki zbiera się i, o ile to konieczne, rozrzedza się końcowym rozcieńczalnikiem do odpowiedniego dla zamrażania stężenia. Korzystnie, stężenie plemników po końcowym rozrzedzeniu a przed zamrożeniem jest w zakresie od około 1 x 106/ml do około 300 x 106/ml, korzystniej od około 10 x 106/ml do około 50 x 106/ml i najkorzystniej od około 10 x 106/ml do około 20 x 106/ml.
Zamieszczony powyżej opis początkowego rozcieńczalnika stosuje się również do końcowego rozcieńczalnika, który może być taki sam lub różny od początkowego rozcieńczalnika. W konkretnych wykonaniach skład próbki plemników rozrzedzonych końcowym rozcieńczalnikiem jest zasadniczo podobny (jeśli nie taki sam) do składu próbki plemników po dodaniu początkowego rozcieńczalnika.
W korzystnym wykonaniu wynalazku stosuje się jako rozcieńczalnik żółtko jaja-Tris. Po dodaniu rozcieńczalnika zawiesina plemników obejmuje glicerol (krioprotektant); kwas cytrynowy i Tris[hydroksylmetylo]aminometan (bufor); żółtko jaja (substancja organiczna); fruktozę (źródło energii); tylozynę, gentamycynę i linkospektynę (antybiotyki). Typowe przybliżone stężenia tych składników po dodaniu końcowego rozcieńczalnika do izolowanych plemników wynoszą;
Składniki rozcieńczalnika żółtko jaja-Tris
Glicerol: 4-8% obj./obj.
Kwas cytrynowy: 55-75 mM
Tris[hydroksymetylo]aminometan: 190-210 mM
Żółtko jaja: 5-25% obj./obj.
Fruktoza: 45-65 mM
Tylozyna: 25-100 μg/ml
Gentamycyna: 200-300 μg/ml
Linkospektyna: 100-400 μg/ml* *100-400 μg/ml linkomycyny i 100-400 μg/ml spektynomycyny
W odmianie tego wykonania szczególnie odpowiedniego dla zamrażania plemników bydlęcych, stężenia tych składników po dodaniu końcowego rozcieńczalnika do izolowanych plemników wynoszą około 6% (obj./obj.) glicerolu, około 65 mM kwasu cytrynowego, około 200 mM Tris[hydroksymetylo]aminometanu, około 20% (obj./obj.) żółtka jaja, około 56 mM fruktozy, około 50 μg/ml tylozyny, około 250 μg/ml gentamycyny i około 150/300 μg/ml linkospektyny (tj. 150 μg/ml linkomycyny i 300 μg/ml spektynomycyny) w dejonizowanej wodzie.
W alternatywnym wykonaniu zastosowano rozcieńczalnik żółtko jaja-cytrynian. Po dodaniu rozcieńczalnika zawiesina plemników obejmowała glicerol (krioprotektant), cytrynian sodu (bufor), żółtko jaja (substancja organiczna), tylozynę, gentamycynę i linkospektynę (antybiotyki). Typowe przybliżone stężenia tych składników po dodaniu końcowego rozcieńczalnika do izolowanych plemników wynoszą:
Składniki rozcieńczalnika żółtko jaja-cytrynian
Glicerol: 4-8% obj./obj.
Cytrynian sodu: 60-80 mM
Żółtko jaja: 5-25% obj./obj.
Tylozyna: 25-100 μg/ml
Gentamycyna: 200-3 00 μg/ml
Linkospektyna: 100-400 μg/ml* *100-400 μg/ml linkomycyny i 100-400 μg/ml spektynomycyny
PL 211 512 B1
3-7% obj./obj. 140-170 mM 60-80 mM 5-25% obj./obj. 5-12 mM 50-150 μg/ml 400-600 μg/ml 200-700 μg/μl*
Przykładowo, korzystne stężenia dla zamrażania plemników bydlęcych wynoszą około 7% (obj./obj.)glicerolu, około 72 mM cytrynianu sodu, około 20% (obj./obj.) żółtka jaja, około 50 μg/ml tylozyny, około 250 μg/ml gentamycyny i około 250/300 μg/ml linkospektyny.
W innym, alternatywnym wykonaniu zastosowano rozcieńczalnik żółtko jaja-TES-Tris („EY TEST”). Po dodaniu rozcieńczalnika zawiesina plemników obejmowała glicerol (krioprotektant), żółtko jaja i grzane mleko, np. mleko homogenizowane zawierające 1,25% fruktozy z 10% glicerolu (substancje organiczne); tylozynę, gentamycynę i linkospektynę (antybiotyki). Typowe przybliżone stężenia tych składników po dodaniu końcowego rozcieńczalnika do izolowanych plemników wynoszą:
Składniki rozcieńczalnika żółtko jaja-TES-Tris
Glicerol:
Kwas Tris[hydroksymetylometylo]-2-aminoetanosulfonowy:
Tris [hydroksymetylo]aminometan:
Żółtko jaja:
Fruktoza:
Tylozyna:
Gentamycyna:
Linkospektyna:
*200-700 μg/ml linkomycyny i 200-700 μg/ml spektynomycyny
Przykładowo, korzystne stężenia dla zamrażania plemników bydlęcych wynoszą około 5% (obj./obj.)glicerolu, około 158 mM kwasu Tris[hydroksymetylometylo]-2-aminoetanosulfonowego, około 72 mM Tris[hydroksymetylo]aminometanu, około 20% (obj./obj.) żółtka jaja, około 8 mM fruktozy, około 100 μg/ml tylozyny, około 500 μg/ml gentamycyny i około 300/600 μg/ml linkospektyny.
W jeszcze innym alternatywnym wykonaniu wynalazku zastosowano jako rozcieńczalnik mleko. Po dodaniu rozcieńczalnika zawiesina plemników obejmowała glicerol (krioprotektant), ogrzane homogenizowane mleko (substancja organiczna), fruktozę (źródło energii), tylozynę, gentamycynę i linkospektynę (antybiotyki). Typowe przybliżone stężenia tych składników po dodaniu końcowego rozcieńczalnika do izolowanych plemników wynoszą:
Składniki rozcieńczalnika mlecznego
Mleko homogenizowane 90% (obj./obj.)
Glicerol: 3-7% (obj./obj.)
Fruktoza: 1,25% (wag./obj.)
Tylozyna: 50 μg/ml
Gentamycyna: 250 μg/ml
Linkospektyna: 250-300 μg/ml* *250-300 g/ml linkomycyny i 250-300 μg/ml spektynomycyny
Przykładowo, korzystne stężenia dla zamrażania plemników bydlęcych wynoszą około 90% mleka, około 10% (obj./obj.) glicerolu, około 1,25% (wag./obj.) fruktozy, około 50 μg/ml tylozyny, około 250 μg/ml gentamycyny i około 250/300 μg/ml linkospektyny.
Inne standardowo stosowane do zamrażania nasienia rozcieńczalniki mogą być również stosowane jako rozcieńczalnik końcowy w zamrożonych selekcjonowanych plemnikach. Opisano różne rozcieńczalniki optymalizowane do zastosowania w zamrażaniu plemników od różnych gatunków i wiele z nich jest dostępnych na rynku. Rozcieńczalniki do zamrażania końskich plemników zawierają typowo mleko, żółtko jaja, różne cukry, elektrolity i krioprotektant. Przykładowe rozcieńczalniki do zamrażania opisali E. L. Squires i współ., Cooled and Frozen Stallion Semen Animal Reprod. and Biotechnology Laboratory, Bulletin nr 69, Rozdział 8, „Seminal Extenders” str. 49-51 (lipiec 1999).
Równoważenie i zamrażanie plemników
Przez rozrzedzenie próbki plemników uzyskuje się zawiesinę plemników, którą następnie przenosi się do pojemników do zamrażania. Jeżeli plemniki są przeznaczone do stosowania w zapłodnieniu, komórki są dogodnie rozdzielane na indywidualne dawki wystarczające do osiągnięcia zapłodnienia. Wymagane dawki mogą różnić się zasadniczo zależnie od gatunku i są albo dobrze znane (np. dla bydła i koni), albo mogą być łatwo określone. W przypadku selekcjonowanych według płci plemników bydlęcych dogodne dawki są w zakresie od około 1,0 x 106 plemników do około 3,0 x 106 plemników.
Do zamrażania można wykorzystać jakikolwiek odpowiedni pojemnik, na przykład ampułkę, fiolkę i słomkę. Plemniki przeznaczone do Al (sztucznej inseminacji) są zwykle mrożone w słomkach (np. słomkach 0,25 ml lub 0,50 ml) przeznaczonych do stosowania w pistolecie do inseminacji. Korzystnie, bolus rozcieńczalnika jest wciągany do słomki, a po nim kolejno powietrze, plemniki, powietrze i roz10
PL 211 512 B1 cieńczalnik, tak więc plemniki są z obu stron otoczone przez przestrzeń powietrzną, która oddziela je od bolusa rozcieńczalnika przy każdym końcu słomki.
Przed zamrożeniem plemniki zwykle są równoważone w 5°C. Korzystnie plemniki są równoważone przez okres od około 1 godziny do około 18 godzin, korzystniej między około 3 godzin a około 18 godzin, a najkorzystniej między około 3 godzin a około 6 godzin (patrz przykład 2).
Po zrównoważeniu może być zastosowany jakikolwiek standardowy sposób zamrażania o niezbyt dużej szybkości mrożenia (tj. nie przekraczającej około 0,5°C/minutę). Korzystnie prędkość mrożenia wynosi około 0,5°C/minutę. W przykładowym korzystnym wykonaniu plemniki umieszcza się w statycznych oparach ciekłego azotu, a zamrażanie przeprowadza się w trzech różnych stadiach przez okres około 10 minut.
W pierwszym stadium zamrażania plemniki chłodzi się do temperatury od około 5°C do około -15°C z prędkością od około 40°C/minutę do około 65°C/minutę.
W drugim stadium zamrażania plemniki chłodzi się do temperatury od około -15°C do około -60°C z prędkością od około 25°C/minutę do około 35°C/minutę.
W trzecim stadium plemniki zanurza się w ciekłym azocie w około -100°C.
Próbki selekcjonowanych plemników
Próbka zamrożonych plemników obejmuje plemniki selekcjonowane z próbki źródłowej według płci. Plemniki mogą pochodzić od dowolnego gatunku, w tym jakiegokolwiek z tych omówionych powyżej w odniesieniu do sposobu zamrażania. Korzystne wykonania obejmują zamrożone selekcjonowane według płci plemniki bydlęce, końskie, świńskie, owcze, łosia lub bizona. Selekcję według płci przeprowadzono z zastosowaniem cytometrii przepływowej, jak opisano ogólnie powyżej.
Pojemnik zawierający próbkę zamrożonych plemników może być wytworzony z jakiegokolwiek materiału, który nie wchodzi w reakcję z próbką zamrożonych plemników i może mieć dowolny kształt lub inną cechę, która ułatwi wykorzystanie próbki w planowanym zastosowaniu. Dla próbek przeznaczonych do zastosowania w Al, na przykład dogodnie pojemnikiem jest słomka (np. słomka 0,25 ml lub 0,5 ml) przeznaczona do stosowania w pistolecie inseminacyjnym. Pojemnik uszczelnia się w dowolny sposób odpowiedni dla konserwacji próbki w planowanej temperaturze przechowywania, która zwykle wynosi poniżej -80°C Celsjusza. Słomki 0,25 ml mogą być uszczelnione, na przykład, proszkiem PCV, ultradźwiękowo lub bawełniano-poliwinylowym korkiem i/lub kulką stali nierdzewnej (BB).
Sposoby stosowania próbki selekcjonowanych plemników
Zamrożona próbka selekcjonowanych plemników jest odpowiednia do zastosowania w dowolnym sposobie wykorzystującym plemniki. Próbkę można rozmrozić i zastosować w dowolnym konwencjonalnym sposobie zapłodnienia, takim jak sztuczna inseminacja lub zapłodnienie in vitro. Rozmrażanie przeprowadza się w ten sam sposób jak dla zamrożonych nie selekcjonowanych plemników. Krótko mówiąc, słomkę zawierającą zamrożone plemniki zanurza się w kąpieli wodnej utrzymując temperaturę około 35°C do około 37°C przez okres około 20 do około 30 sekund. Po rozmrożeniu złożenie plemników (np. inseminację) przeprowadza się zgodnie ze standardowymi procedurami, biorąc pod uwagę ochronę plemników przed fluktuacjami otoczenia.
Przykłady
P r z y k ł a d 1. Wpływy rozrzedzenia na plemniki
Cel: określenie wpływu stężenia plemników na ruchliwość plemników dla nie zamrożonych, nie sortowanych, ale bardzo rozrzedzonych plemników.
A. Wpływy rozrzedzenia na nie przemywane plemniki
1. Pobieranie próbki źródłowej. Nasienie pobrano od byków zgodnie z rutynowym schematem pobierania stosując sztuczną pochwę jak opisano w J. Schenk, Proc. 17 NAAB, str. 48-58 (1998) i Saacke RG, Proc. NAAB Tech. Conf. Al Reprod. 41: 22-27 (1972). Wszystkie stosowane ejakulaty zawierały ponad 50% plemników wykazujących ruch postępowy i ponad 75% plemników o prawidłowej morfologii. Do oczyszczonego surowego ejakulatu dodano antybiotyki jak opisał S. Shin, Proc. NAAB Tech. Conf. Al Reprod. 11: 33-38 (1986) w 15 minut od pobrania, a stężenie plemników określono stosując spektrofotometr.
2. Metody. Nasienie od 4 byków rozrzedzono do 1,25, 2,5, 5, 10, 15 i 20 x 106/ml stosując rozcieńczalnik żółtko jaja-cytrynian (EYC) wytworzony z 20% (obj./obj.) żółtka jaja w 72 mM cytrynianu sodu, 50 Tg/ml tylozyny, 250 Tg/ml gentamycyny i 250/300 Tg/ml linkospektyny. Każdą próbkę wytworzono podwójnie (2 probówki/rozrzedzenie/byk) i całkowita objętość na probówkę wynosiła 8 ml. Wszystkie próbki inkubowano przez 60 minut w 22°C, następnie wirowano stosując wirówkę typu
PL 211 512 B1 „swinging bucket” (Eppendorf, Model # 5810R) przy 600 x g przez 10 minut zatężenia celu zagęszczenia nasienia. Po wirowaniu z jednego zestawu podwójnych probówek nie usunięto supernatantu; nasienie ponownie zawieszono w tym samym ośrodku i w wyjściowym stężeniu, przez powtarzaną delikatną aspirację z zastosowaniem 5-ml pipety serologicznej (drugi zestaw podwójnych probówek zastosowano w przykładzie 1B). Próbki nasienia ochładzano następnie do 5°C przy 0,2°C/min przez 90 minut. To nasienie określono jako „przemywane niepłukane nasienie”. Wszystkie próbki inkubowano przy 5°C przez 24 lub 48 godzin po pobraniu.
3. Ocena ruchliwości. Po inkubacji próbki ogrzano do 37°C stosując inkubator typu „dry block” przez 10 minut przed określeniem ruchliwości. Do tego eksperymentu dla każdej próbki określono pojedyncze, ślepe szacowanie procentu plemników o ruchliwość postępowej. Postępowa ruchliwość plemników była określona subiektywnie dla każdej podklasy przez pojedynczego obserwatora (x 200, mikroskop fazowo-kontrastowy); inna osoba przygotowywała szkiełka przedmiotowe mikroskopu w sposób zrandomizowany, tak więc obserwator był nieświadomy sposobów traktowania.
4. Analiza statystyczna. Dane analizowano analizą wariancji (SAS Institute, Cary, North Carolina) z czynnikami takimi jak dawca byk i stężenie po początkowym rozrzedzeniu. Wykonano oddzielne analizy dla każdego czasu inkubacji. Trendy rozrzedzenia badano stosując (log) kontrastów linearnych.
5. Wyniki. Dane dla nie przemywanych plemników (tabela 1) ujawniły (log) liniową zależność (P < 0,01) dla obu czasów inkubacji. Procent ruchliwych plemników wzrastał wraz ze wzrostem stężenia plemników od 1,25 x 106/ml do 10 x 106/ml, ale później występowała mała różnica. Składowa sześcienna była znacząca (P < 0,05) dla 24-godzinnych i marginalnie znacząca (P < 0,1) dla 48-godzinnych inkubacji. W obu przypadkach występował efekt byka (P < 0,01).
T a b e l a 1
Wpływ chłodzenia na ruchliwość nie przemywanych plemników (%) po ochłodzeniu do 5°C
Rozrzedzenie (106/ml) Inkubacja w 5°C
24 ha 48 hb
1,25 18c 0c
2,5 38c,d 6 ąd
5,0 56d 31d,e
10,0 61d 42e
15,0 55d 44e
20,0 58d 41e
S.E.f 5,6 6,4
a (log) efekty liniowe (P < 0,01) i sześcienne (P < 0,05).
b (log) efekty liniowe (P < 0,01) i sześcienne (P < 0,1).
c' ,e Średnie w kolumnach bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,05). f błąd średniokwadratowy ΛΝΟΥΛ + Ά (SAS Institute, Cary, NC, USA).
Wpływy rozrzedzenia na przemywane plemniki
1. Pobranie próbki źródłowej. W doświadczeniu tym zastosowano drugi zestaw podwójnych probówek zawierających próbki, przygotowany w przykładzie 1A.
2. Metody. Nasienie rozrzedzano, inkubowano i zagęszczano przez wirowanie jak w przykładzie 1A. Po odwirowaniu z każdej probówki zaaspirowano 7,1 ml supernatantu, usuwając większość plazmy nasienia i pozostawiając plemniki w 900 μl osadu. Plemniki rozrzedzono w EYC (patrz przykład 1A) wytwarzając zawiesiny plemników 10 x 106/ml lub 20 x 106/ml. Następnie, próbki ochładzano do 5°C przez 90 minut jak w przykładzie 1A.
3. Ocena ruchliwości. Próbki ogrzewano i oceniano ruchliwość postępową jak w przykładzie 1A.
4. Analiza statystyczna. Dane analizowano jak w przykładzie 1A. Ponadto dane w przykładzie 1B analizowano dla stężenia podczas inkubacji w 5°C.
5. Wyniki. Dane dla przemywanych plemników (tabela 2) nie ujawniły znacznych wpływów traktowania, gdy plemniki oceniano po 24 godzinach. Jednak po 48 godzinnym przechowywaniu w 5°C
PL 211 512 B1 wystąpiły efekty byka, rozrzedzenia początkowego, stężenia podczas inkubacji i byka przez inkubację (P < 0,05). Więcej plemników zachowało ruchliwość, gdy utrzymywano je w 20 x 106/ml niż przy 10 x 106/ml (31% vs. 20%; P < 0,05). Początkowe rozrzedzenia 1,25, 2,5 i 5 x 106 plemników/ml dały ruchliwość postępową niższą niż 10 x 106 plemników/ml (P < 0,05), ze średnimi odpowiedniego efektu głównego 19, 20, 27 i 37% ruchliwych plemników.
T a b e l a 2
Skumulowane wpływy przemywania, rozrzedzania, zagęszczania i ochładzania na ruchliwość postępową plemników
Stężenie plemników podczas 1 h wstępnej inkubacji w 37°C (%) Przechowywanie w 5°C - stężenie plemników i czas trwania
24 h 48 ha
20 x 106/ml 10 x 106/ml 20 x 106/ml 10 x 106/mlb
1,25 45 49 24 15
2,5 51 40 29 11
5,0 54 54 32 21
10,0 51 50 40 34
15,0 60 41
20,0 55 40
a Stężenie 20 x 106 plemników/ml przewyższało (P < 0,05) 10 x 106 plemników/ml po 48 h przechowywania. Również wstępne rozrzedzenie 10 x 106 przewyższało niższe rozrzedzenia (P < 0,05).
Połączone błędy standardowe, V błąd średniokwadratowy ΛΝΟνΛ + 4N wynosił 4,0 dla 24 h i 2,8 dla 48 h inkubacji. b Istotny trend (log) liniowy (P < 0,06).
Wniosek
Wysokie rozrzedzenie i ochładzanie nasienia powodowało istotne zmniejszenie procentu ruchliwych plemników, bez względu na obecność czy usunięcie plazmy nasienia. Jednak ten efekt rozrzedzenia był bardzo osłabiony przy zagęszczeniu rozrzedzonego nasienia do 10 x 106/ml, a jeszcze bardziej do 20 x 106/ml przed przechowywaniem w 5°C.
Nasienie od pewnych dawców lepiej tolerowało rozrzedzenie niż nasienie od innych byków; jednak stwierdzone różnice są typowe. Silnie rozrzedzone nasienie może być przyczyną uszkodzenia plemników podczas sortowania, częściowo przez usunięcie ochronnych związków z plazmy nasienia.
P r z y k ł a d 2. Wpływy czasu równoważenia przed zamrożeniem sortowanych plemników
Cel: ocena wpływu czasów równoważenia (3, 6 i 18 h, 5°C) przed zamrożeniem przepływowo sortowanych plemników.
Powtórzono w całości następujące doświadczenie z użyciem tych samych dawców - byków:
1. Pobranie próbki źródłowej. Nasienie od 4 byków pobrano i przygotowano jak opisano w przykładzie 1A.
2. Metody.
a) Barwienie i przygotowanie do sortowania
i) Przygotowanie roztworu podstawowego barwnika: roztwór podstawowy 8,89 mM Hoechst 33342 (bis-Benzimid H-33342; #190305, ICN Biomedicals Inc., Aurora, OH) przygotowano w dejonizowanej wodzie.
ii) Procedura barwienia plemników: plemniki rozrzedzono w modyfikowanym buforze TALP (tabela 3) do 400 x 106 plemników/ml. Po rozrzedzeniu do zawiesin plemników dodano barwnik Hoechst
33342 w stężeniu 224 μM. Po dodaniu barwnika do zawiesin plemników próbki inkubowano przez minut w 34°C. Po inkubacji plemniki rozrzedzono do 100 x 106/ml dodając TALP zawierający
2,67% oczyszczonego żółtka jaja i 0,002% barwnika do żywności (FD & C #40), który wygasza fluorescencję Hoechst 33342 w plemnikach z uszkodzonymi błonami komórkowymi, pozwalając na odrzucenie ich w procesie sortowania. Tuż przed sortowaniem przepływowym próbki filtrowano przy ciężarze jednostkowym przez filtr nylonowy o wielkości oczka 40 μm, w celu usunięcia resztek i/lub zlepionych plemników.
PL 211 512 B1
b) Sortowanie. Do wzbudzania barwnika Hoechst zastosowano dwuliniowy laser argonowy działający przy 351 i 364 nm i 150 mW. Zastosowano cytometr przepływowy/sorter komórkowy SX ®
MoFlo® (Cytomation, Inc., Fort Collins, CO, USA) działający przy 344,74 Pa (50 psi). Zastosowano płyn osłonowy oparty na Tris, zawierający Tris(hydroksymetylo)aminometan (Tris; 197,0 mM; #T-1503, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA), monohydrat kwasu cytrynowego (55,4 mM; #C-7129, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA) i fruktozę (47,5 mM; #F-0127, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA). Do płynu osłonowego opartego na Tris dodano również antybiotyki pierwszego rzutu obejmujące 0,58 g/l penicyliny i 0,05 g/l siarczanu streptomycyny.
Plemniki sortowano w procesie określanym jako „sortowanie masowe”, który pozwala na szybkie gromadzenie dużej liczby plemników, tak więc w rozsądnym czasie można wykonać przykłady na dużą skalę.
Plemniki przechodziły przez cytometr przepływowy w standardowych warunkach roboczych z wyjątkiem tego, że wszystkie krople zawierające żywe plemniki zbierano do pojedynczej probówki, a nie sortowano do dwóch probówek w oparciu o płeć.
Plemniki sortowano na podstawie ich żywotności; stąd plemniki o uszkodzonych błonach komórkowych były wykluczane podczas masowego sortowania.
Podczas sortowania barwione plemniki utrzymywano w 22 ± 1°C. Masowo sortowane plemniki zbierano do 50 ml plastikowych probówek zawierających 2 ml 20% rozcieńczalnika żółtko jaja-Tris, przygotowanego z 20% żółtka jaja (obj./obj.) w 200 ml Tris, 65 mM kwasu cytrynowego, 56 mM fruktozy, 50 Tg/ml tylozyny, 250 Tg/ml gentamycyny i 150/300 Tg/ml linkospektyny w dejonizowanej wodzie.
Rozcieńczalnik żółtko jaja-Tris określono jako „Tris-frakcja A” w celu podkreślenia braku glicerolu w tym punkcie procedury.
Plemniki zebrano do probówek tak, by zawierały 12 ml i w przybliżeniu około 6 x 106 plemników.
Plemniki były później inkubowane w 22°C przez 1 do 3 godzin w celu symulacji warunków sortowania według płci.
c) Przygotowanie do zamrożenia. Po inkubacji sortowane plemniki ochładzano do 5°C przez okres 70 minut. Po ochłodzeniu zawartości dwóch probówek spulowano i chłodzono, wirówkę typu „swinging bucket” nastawiono na 5°C i przez 20 minut wirowano przy 850 x g. Po usunięciu supernatantu proces kontynuowano w 5°C dodając około 150 μΐ rozcieńczalnika Tris-frakcja A do około 150 μΐ osadu plemników w celu otrzymania stężenia plemników w przybliżeniu 40 x 106/ml. Plemniki od indywidualnych byków spulowano i bezzwłocznie rozrzedzono w równej objętości rozcieńczalnika żółtko jaja-Tris zawierającego 12% (obj./obj.) glicerolu („Tris-frakcja B”). Tris-frakcję B dodano do zawiesiny plemników w 2 równych objętościach w 15 minutowych odstępach w celu dostosowania końcowego stężenia plemników do 20 x 106/ml. Końcowe stężenie glicerolu w kompletnym rozcieńczalniku żółtko jaja-Tris, wynosiło 6% (obj./obj.).
d) Równoważenie i mrożenie. Następnie, rozrzedzone plemniki umieszczono w 0,25 ml słomkach z polichlorku winylu do mrożenia rutynowymi procedurami na stojakach w statycznych oparach ciekłego azotu. Dwie słomki od każdego z 4 byków zamrożono po 3, 6 i 18 godzinach całkowitego czasu równoważenia w 5°C.
3. Ocena ruchliwości po rozmrożeniu. Słomki rozmrażano w 37°C łaźni wodnej przez 30 sekund. Ślepe szacowanie ruchliwości postępowej wykonano po inkubacji próbek w 37°C dla 0, 1 i 2 godzin po rozmrożeniu. Każdy z dwóch obserwatorów szacował postępową ruchliwość plemników z każdej z dwóch słomek. Te cztery ślepe oznaczenia ilościowe dla każdej jednostki doświadczalnej reprezentują podpróby.
4. Analiza statystyczna. Podpróby analizowano statystycznie jako subplot głównego płotu metodą najmniejszych kwadratów ANOVA w celu zbadania wpływów dowolnej obserwacji i interakcji obserwacja x traktowanie. N odnosi się do liczby jednostek doświadczalnych, a nie podprób; błędy standardowe obliczono na podstawie średnich z 4 podprób z błędów średniokwadratowych ANOVA i liczb jednostek doświadczalnych; przedstawiono średnie najmniejszych kwadratów.
Wpływy traktowania oceniono przez oddzielne ANOVA dla każdego czasu inkubacji. Model obejmował dawców-byki jako efekt losowy, a czas równoważenia i obserwację jako efekty ustalone; subplot składał się z określonych obserwacji i związanych z nimi interakcji.
5. Wyniki. Czasy równoważenia 3 i 6 godzin przeważały nad 18 godzinami (tabela 4) w oparciu o procent postępowo poruszających się plemników dla 0 i 1 godziny (P < 0,01), ale nie dla 2 godzin inkubacji po rozmrożeniu. Efekty dawców były oczywiste przy czasach inkubacji 1 i 2 godziny (P < 0,05),
PL 211 512 B1 ale nie przy 0 godzin. Nie było znaczącego wpływu (P > 0,1) przez interakcję w czasie równoważenia, jak również nie było znacznego wpływu obserwacji na jakąkolwiek odpowiedź.
T a b e l a 3
Zmodyfikowany bufor TALP
Składnik Stężenie
NaCI 95,0 mM
KCI 3,0 mM
NaHPO4 0,3 mM
NaHCO3 10,0 mM
MgCl2 · 6 H2O 0,4 mM
Pirogronian sodu 2,0 mM
Glukoza 5,0 mM
Mleczan sodu 25,0 mM
HEPESa 40,0 mM
Bydlęca albumina osoczowab 3,0 mg/ml
Siarczan gentamycyny 30,0 μg/ml
a #H3375, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA b #US70195, frakcja V; Amersham/Life Science, Cleveland, OH, USA
T a b e l a 4
Wpływ czasu równoważenia przed zamrożeniem na postępową ruchliwość po rozmrożeniu (%)
Równoważenie przy 5°C Inkubacja w 37°C po rozmrożeniu
0 h 1 h 2 h
3 h 41a 36a,b 16
6 h 41a 37a 18
18 h 35b 31b 12
S. E.c 1,5 0,8 2,0
a,b w kolumnach średnie bez wspólnego wykładnika różnią się (P < 0,05), Tukey's HSD.
c połączone błędy standardowe, V błąd średniokwadratawy ΛΝΟνΛ
6. Wniosek
Wyniki wskazały na brak różnic w ruchliwości plemników po rozmrożeniu w całkowitym czasie równoważenia 3-6 godzin w 5°C, ale występował znaczny spadek ruchliwości plemników po 18 godzinach równoważenia w 5°C przed zamrożeniem. Zakres 3-6 godzin pozwala na połączenie 2 kolejnych 3-godzinnych serii sortowania dla zamrożonych plemników bez zmniejszenia ruchliwości po rozmrożeniu.
Ponieważ interakcja byk i czas równoważenia nie była znacząca, czas równoważenia 3 do 6 godzin był właściwy, z zastrzeżeniem, że wykorzystano tylko 4 byki. Optymalny czas równoważenia dla mniejszej ilości byków przypuszczalnie wynosi > 6 godzin.
P r z y k ł a d 3. Wpływy stężenia barwnika i mocy lasera na sortowane plemniki
Cel: ocena wpływu stężenia barwnika Hoechst 33342 w kombinacji z intensywnością lasera na sortowane przepływowo plemniki.
1. Pobranie próbki źródłowej. Nasienie pobrano od 6 byków i przygotowano jak w przykładzie 1A.
2. Metody
a) Projekt doświadczalny. Zastosowano jeden ejakulat (2 byki) i 2 ejakulaty z różnych dni (4 byki) w projekcie 2 przez 2 plus kontrola.
PL 211 512 B1
b) Barwienie i sortowanie. Barwienie, przygotowanie do sortowania i sortowanie plemników wykonano jak opisano w przykładzie 2 z wyjątkiem tego, że barwnik Hoechst 33342 dodano do zawiesin plemników w stężeniu końcowym 149 TM lub 224 TM; a plemniki sortowano masowo laserem działającym przy 100 mW lub 150 mW doprowadzonej mocy. Sortowane masowo plemniki zebrano do 50 ml plastikowych probówek, jak opisane w przykładzie 2. Dla każdego byka przez 1 godzinę zebrano cztery probówki zawierające w przybliżeniu 15 x 106 całkowitego nasienia/probówkę. Sortowane plemniki inkubowano przez 1 godzinę w 22°C symulując dłuższy czas sortowania.
c) Przygotowanie do zamrożenia. Po inkubacji plemniki ochłodzono jak w przykładzie 2. Następnie, plemniki zagęszczono przez wirowanie w 5°C przy 850 x g przez 20 minut. Po usunięciu supernatantu do każdych 150 μl osadu plemników dodano 150 μl rozcieńczalnika Tris-frakcja A. Wszystkie osady plemników zawieszono przez delikatną powtarzaną aspirację i spulowano plemniki od indywidualnych byków. Rozcieńczalnik Tris-frakcja B dodawano stopniowo jak w przykładzie 2. Dla każdego byka przygotowano nie barwioną i nie sortowaną kontrolę przy 20 x 106 plemników/ml w rozcieńczalniku Tris zawierającym 6% glicerol i ochłodzono do 5°C, podczas gdy sortowane masowo było plemniki były przygotowywane.
d) Równoważenie i zamrażanie. Kontrolę i sortowane plemniki umieszczono w 0,25 ml słomkach z polichlorku winylu, jak opisano w przykładzie 2, równoważono w 5°C przez 3 godziny, a następnie zamrożono konwencjonalnie.
4. Analiza statystyczna. Ogólny opis analizy statystycznej dostarczono w przykładzie 2. Szczególnie wpływy traktowania oszacowano przez ANOVA. Model obejmował stężenie barwnika, intensywność lasera i byki w głównym plocie, oraz obserwatora i związane interakcje w subplocie. Byki uznano za efekt losowy, a inne czynniki jako ustalone.
5. Wyniki. Wpływy byków na procent plemników o postępowej ruchliwości bezpośrednio po rozmrożeniu (P < 0,1) oraz po 1 i 2 godzinach inkubacji w 37°C (P < 0,05) były znaczne. Nie stwierdzono wpływu stężenia barwnika lub byka x stężenie barwnika na ruchliwość plemników przy dowolnym czasie inkubacji. Przy uznaniu wpływu dawców - byków za efekt losowy 150 mM moc lasera powodowała niższą ruchliwość plemników po rozmrożeniu niż 100 mW przy 0 godzinach inkubacji (P < 0,1), ale nie przy innych czasach inkubacji (tabela 5). Jeżeli byki uznano za efekty ustalone, 150 mW moc powodowała niższą ruchliwość plemników niż 100 mW (P < 0,05) przy wszystkich 3 czasach inkubacji. Stwierdzono wpływ byka i mocy lasera (P < 0,05) na ruchliwość plemników przy 1 godzinie, ale nie przy 0 lub 2 godzinach inkubacji. Również najwyższa moc lasera powodowała niższą ruchliwość plemników niż kontrola (P < 0,05) przy 0 i 1 godzinie inkubacji (tabela 5). Stwierdzono znaczny efekt obserwacji przy 1 godzinie, ale nie przy 0 lub 2 godzinach inkubacji. Nie stwierdzono interakcji obserwacja i traktowanie (P > 0,1).
T a b e l a 5
Wpływy intensywności lasera i stężenia barwnika na ruchliwość (%) po rozmrożeniu
Średnie efektu głównego Inkubacja w 37°C
0 h 1 h 2 h
Kontrola 49 44 33
Stężenie barwnika
149 μM 41 39 30
224 μM 42 39 30
Intensywność lasera
100 mW 46 42 33
150 mW 38a 35b 27
S. E.c 2,2 1,2 1,3
a Istotny efekt główny (P < 0,1) różni się od kontroli (P < 0,05).
b Różni się od kontroli (P < 0,05).
c Połączone błędy standardowe, V błąd średniokwadratowy ΛΝΟΥΛ +
PL 211 512 B1
6. Wnioski. Procent plemników o postępowej ruchliwości zmniejszał się wskutek procesu barwienia i sortowania. Wyższa intensywność lasera była bardziej szkodliwa niż niższa intensywność lasera. Nie stwierdzono wpływu stężenia barwnika na ruchliwość plemników po rozmrożeniu. Zatem pobudzenie barwnika Hoechst 33342 związanego z plemnikiem przy niższych intensywnościach lasera jest mniej szkodliwe i barwienie plemników przy najwyższym stężeniu barwnika nie miało szkodl iwego wpływu na ruchliwość po rozmrożeniu. Obserwowane uszkodzenie przypuszczalnie dotyczyło aparatu ruchowego plemników.
P r z y k ł a d 4. Ocena poprzedzających sortowanie procedur barwienia i wybór rozcieńczalników do kriokonserwacji plemników
Cel: (1) ocena trzech poprzedzających sortowanie zabiegów na plemnikach; i (2) ocena kombinacji płynu osłonowego i rozcieńczalnika dla kriokonserwacji sortowanych przepływowo plemników.
Powtórzono w całości następujące doświadczenie:
1. Pobranie próbki źródłowej. Pobrano nasienie od 4 byków i przygotowano jak w przykładzie 1A.
2. Metody
a) Projekt doświadczalny. Zaprojektowano 3 (traktowania poprzedzające sortowanie) przez 3 (rozcieńczalniki) przez 2 (płyny osłonowe) przez 4 (dawcy-byki) przez 2 (obserwacje) silniowy eksperyment w celu określenia najlepszej procedury przetrzymywania plemników przed sortowaniem i oceny trzech rozcieńczalników do kriokonserwacji sortowanych plemników.
b) Przygotowanie i barwienie próbki. Świeżo zebrane nasienie od każdego z 4 byków potraktowano następująco:
(1) rozrzedzono do 400 x 106/ml w zmodyfikowanym TALP (patrz przykład 2, tabela 3) i barwiono przez 1 godzinę w 34°C przed masowym sortowaniem („rozrzedzenie - 0 h);
(2) inkubowano bez domieszki w 22°C przez 3 godziny przed rozrzedzeniem, barwieniem i sortowaniem („czysty - 3 h”); lub (3) rozrzedzono i barwiono jako „rozrzedzenie 0 h”, a następnie inkubowano w 22°C przez 3 godziny przed masowym sortowaniem („rozrzedzone - 3 h”).
c) Rozcieńczalniki. Porównano następujące rozcieńczalniki do zamrażania: EYC (patrz przykład 1) zawierający 7% glicerolu, żółtko jaja-Tris (patrz przykład 2) zawierający 6% glicerolu i żółtko jaja-TES-Tris (TEST) zawierający 5% glicerolu. EYC „Frakcja A” dotyczy rozcieńczalnika EYC nie zawierającego glicerolu, a EYC „Frakcja B” dotyczy rozcieńczalnika EYC zawierającego dwa razy końcowe żądane stężenie glicerolu (tj. 14%). Zatem, gdy frakcje EYC A i B połączono w równych objętościach, końcowy rozcieńczalnik EYC zawierał 7% glicerolu. Frakcje Tris A i B nazwano podobnie i opisano w przykładzie 2. Rozcieńczalnik TEST przygotowano jako kompletny rozcieńczalnik zawierający 5% glicerolu; stąd nie było frakcji „A” i „B” dla TEST.
d) Płyn osłonowy. Jak opisano w przykładzie 2 płynem osłonowym był albo 98,6 mM dihydrat cytrynianu sodu (#279-3, Fisher Scientific, Fair Lawn, NJ), albo Tris. Oba rodzaje płynu osłonowego doprowadzono do pH 6,8; osmolalność wynosiła około 270 do 280 mOsm/kg. Płyn osłonowy Tris stosowano przy zbieraniu nasienia, które później rozrzedzano w rozcieńczalnikach do zamrażania żółtko jaja-Tris i TEST. Płyn osłonowy, zawierający 98,6 mM dihydratu cytrynianu sodu, zastosowano do zbierania nasienia rozrzedzanego później rozcieńczalnikiem do mrożenia EYC.
e) Sortowanie. W przybliżeniu 58 x 106 plemników dla każdej kombinacji zabiegu poprzedzającego sortowanie, płyn osłonowy i rozcieńczalnik były masowo sortowane jak opisano w przykładzie 2, przy 150 mW mocy padającej lasera. Dla każdego sortowania plemniki zbierano przez około 1 godzinę. Po sortowaniu próbki inkubowano w 22°C przez 2 godziny symulując 3 godziny sortowania.
f) Przygotowanie do zamrażania. Po inkubacji plemniki ochładzano jak w przykładzie 2. Po schłodzeniu próbki wirowano w 5°C przy 850 x g przez 20 minut. Każda próbka obejmowała około 28 ml całkowitej objętości i była zawarta w 50 ml probówce z tworzywa sztucznego. Po usunięciu supernatantu plemniki z powrotem umieszczono w zimnym pomieszczeniu o temperaturze 5°C w celu rozrzedzenia. Próbki rozrzedzono do 40 x 106/ml przez złożenie 131 μl zawiesiny plemników w 69 μl frakcji A EYC, frakcji A żółtko jaja-Tris lub rozcieńczalniku TEST. Zawiesiny natychmiast doprowadzono do 20 x 106 plemników/ml przez dodanie dobranego rozcieńczalnika zawierającego glicerol (tj. frakcję B EYC, frakcję B Tris) lub TEST. Rozcieńczalniki frakcji B dodawano do odpowiednich próbek stopniowo (2X) w 15 minutowych odstępach jak opisano w przykładzie 2. TEST dodano do plemników stopniowo w ten sam sposób jak rozcieńczalniki frakcje B EYC i Tris.
PL 211 512 B1
g) Równoważenie i zamrażanie. Plemniki umieszczono w 0,25 ml rurkach probówkach z polichlorkiem winylu, równoważono przez 3 godziny w 5°C i natychmiast zamrażano w statycznych parach ciekłego azotu.
3. Ocena ruchliwości po rozmrożeniu. Rozmrażanie i ocenianie plemników po rozmrożeniu wykonano jak w przykładzie 2.
4. Analiza statystyczna. Ogólny opis analizy statystycznej dostarczono w przykładzie 2. Konkretnie, wpływy traktowań oceniono przez oddzielną analizę wariancji dla każdego czasu inkubacji po rozmrożeniu. Główny plot obejmował traktowanie przed sortowaniem, rozcieńczalniki i byki; subplot składał o się z obserwacji i towarzyszących interakcji. Byki przyjęto za efekt losowy, a inne czynniki za ustalone. Całe doświadczenie powtórzono dwa razy. Do separacji średnich zastosowano test Tukey'a HDS.
5. Wyniki. Na postępową ruchliwość po rozmrożeniu masowo sortowanych plemników wpływano (P < 0,05) przez rozcieńczalnik i dawców-byki przy każdym czasie inkubacji po rozmrożeniu i przez procedurę poprzedzającą sortowanie przy 0 h inkubacji (tabela 6). Nie stwierdzono różnic spowodowanych płynami osłonowymi (P > 0,05). Przy 0 h inkubacji po rozmrożeniu stosowanie 3-godzinnego zabiegu bez domieszki powodowało większy ruch plemników po zamrożeniu i rozmrożeniu niż inne 2 zabiegi barwienia poprzedzające sortowanie (P < 0,05; tabela 6). Jednak procedury poprzedzające sortowanie nie były statystycznie istotne po inkubacji plemników po rozmrożeniu dla 1 lub 2 godziny z bykami przyjętymi za efekt losowy. Ważne jest, że przy tych 2 czasach inkubacji nie było znaczących interakcji zabieg poprzedzający sortowanie x byk (P < 0,05). Ponadto, zabieg poprzedzający sortowanie mógł być istotnym efektem przy wszystkich czasach inkubacji po rozmrożeniu, jeżeli byki byłyby uważane za efekt ustalony. Natychmiast po rozmrożeniu (0 h), TEST był najlepszym rozcieńczalnikiem, ale po 1 lub 2 godzinach inkubacji w 37°C, najlepszym rozcieńczalnikiem był Tris. Ważne jest, że nie było interakcji zabieg poprzedzający sortowanie x rozcieńczalnik dla jakiejkolwiek odpowiedzi. Stwierdzono efekty obserwacji (P < 0,01) przy wszystkich czasach inkubacji, ale nie stwierdzono interakcji obserwacje x traktowanie. Stwierdzono interakcję byk x rozcieńczalnik (P < 0,05) przy wszystkich 3 czasach inkubacji.
T a b e l a 6
Główne wpływy zabiegu poprzedzającego sortowanie i rozcieńczalników do mrożenia na postępową ruchliwość plemników po rozmrożeniu (%)
Procedura poprzedzająca sortowanie Inkubacja przy 37°C
Rozcieńczalnik 0 h 1 h 2 h
Rozrzedzenie - 0 h Średnia 39a 32 22
Bez domieszki - 3 h Średnia 43b 36 25
Rozrzedzenie - 3 h Średnia 38a 31 19
Średnia EYC 36a 29a 17a
Średnia Tris 40b 39b 29b
Średnia TEST 44c 33c 20a
S.E. 0,8 0,8 0,7
a,b,c średnie w kolumnach, z efektami głównymi, bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,05).
d Połączone błędy standardowe, V błąd średniokwadratowy ANOVA +7A?
6. Wniosek. Badanie wykazało, że przetrzymywanie nasienia bez domieszki przez 3 godziny przed rozrzedzeniem, barwieniem i sortowaniem było lepsze, niż bezpośrednie rozrzedzenie i barwienie 0 h lub 3 godziny później. Zatem, sortowanie najlepiej jest prowadzić z nową próbką oryginalnego ejakulatu, który przetrzymywano bez domieszki przez 3 godziny i następnie barwiono, a nie z oryginalną próbką nasienia barwioną i przetrzymywaną przy 400 x 106 plemników/ml. Gdyby nawet rozcieńczalnik TEST dostarczał wyższej ruchliwości po rozmrożeniu w 0 h, Tris był lepszym rozcieńczalnikiem, gdy plemniki były poddawane stresowi przez inkubację w 37°C. Każdy płyn osłonowy działał równie dobrze dla każdego rozcieńczalnika. W oparciu o te wyniki do standardowej procedury operacyjnej włączono stosowanie płynu osłonowego Tris w połączeniu z rozcieńczalnikiem do zamrażania Tris.
PL 211 512 B1
P r z y k ł a d 5. Wpływy dodatków rozcieńczalnika na sortowane plemniki
Cel: Ocena wpływu dodania dodecylosiarczanu sodu („SDS”) do rozcieńczalnika do zamrażania na sortowane przepływowo plemniki.
A. Ocena wpływu stężenia SDS w rozcieńczalniku do mrożenia
1. Pobranie próbki źródłowej. Pobrano nasienie od 6 byków i przygotowano jak opisano w przykładzie 1A.
2. Metody. Nasienie od każdego z 6 byków rozrzedzono do 20 x 106/ml w rozcieńczalniku 20% całe jajko-Tris („WET”), zawierającym 0, 0,03, 0,06, 0,09 lub 0,12 procent SDS, umieszczono w słomkach i zamrożono. Rozcieńczalnik WET przygotowano stosując 3,028 g Tris[hydroksymetylo]aminometanu, 1,78 g monohydratu kwasu cytrynowego i 1,25 g fruktozy na 100 ml podwójnie destylowanej wody, do której dodano 20% całe jajko (obj./obj.). Wytworzono rozcieńczalnik WET o pH około 7,0 i końcowym stężeniu glicerolu około 6% (obj./obj.). Rozcieńczalnik WET zawierał również 1000 lU penicyliny „G” sodowej i 100 Tg siarczanu streptomycyny/ml.
3. Wyniki. Odpowiednie średnie (n = 1 próbka od każdego z 6 byków) wynosiły 51, 51, 50, 51 i 48% plemników o postępowej ruchliwości w przybliżeniu 10 minut po rozmrożeniu. Opierając się na tych wynikach w przykładzie 5B zastosowano 0,06 % SDS. B. Ocena wpływów 0,06 % SDS w różnych rozcieńczalnikach do zamrażania na ruchliwość po rozmrożeniu przepływowo sortowanych plemników
1. Pobranie próbki źródłowej. Pobrano nasienie od 6 byków i przygotowano jak w przykładzie 1A.
2. Metody. Badano ruchliwość po rozmrożeniu plemników zamrożonych w rozcieńczalnikach żółtko jaja-Tris i WET (patrz przykład 5A) z i bez 0,06% SDS. Końcowa zawartość glicerolu w obu rozcieńczalnikach wynosiła 6%.
a) Barwienie, przygotowanie do sortowania, sortowanie. Barwione próbki plemników przygotowano z ejakulatu od każdego z 8 byków, jak opisano w przykładzie 2. Barwione plemniki sortowano masowo z zastosowaniem płynu osłonowego jak w przykładzie 2, z wyjątkiem tego, że sortowanie wykonano stosując 135 mW moc padającą lasera. Sortowane plemniki zebrano do 50 ml probówek ze sztucznego tworzywa, zawierających 2 ml frakcji A buforu do zamrażania dla każdego rozcieńczalnika; 15 x 106 całkowitych sortowanych plemników (25 ml) dla każdego traktowania zebrano i inkubowano przez 1 godzinę w 22°C w celu symulowania dłuższego sortowania.
b) Przygotowanie do mrożenia. Rozrzedzone plemniki ochłodzono do 5°C przez 90 minut. Równą objętość odpowiedniego rozcieńczalnika frakcji B dodano stopniowo (2 x) w 15 minutowych odstępach do każdej 50 ml probówki z tworzywa sztucznego zawierającej sortowane plemniki. Próbki 25 ml traktowane rozcieńczalnikiem zagęszczano przez wirowanie przez 20 minut przy 850 x g w wirówce chłodniczej. Supernatant usunięto pozostawiając 600 Tl osadu plemników, który zawieszono przez delikatne wirowanie przez 15 sekund. Nie dodano dodatkowego rozcieńczalnika do osadu plemników, ponieważ zawiesina zawierająca osad zawierała już glicerol. Stężenie zawiesiny plemników wynosiło w przybliżeniu 20 x 106/ml. Dla każdego byka przygotowano niebarwioną i niesortowaną kontrolę o 20 x 106 plemników/ml w rozcieńczalniku żółtko jaja-Tris, zawierającym 6% glicerol. Kontrolę umieszczono w pomieszczeniu chłodniczym w 5°C, podczas gdy przeprowadzano masowe sortowanie.
c) Równoważenie i zamrażanie. Wszystkie kontrole i sortowane masowo plemniki zapakowano i zamrożono w tym samym czasie. Plemniki umieszczono w 0,25 ml rurkach probówkach z polichlorku winylu, równoważono przez około 3-6 godzin w 5°C i następnie zamrożono w statycznych oparach ciekłego azotu.
3. Ocena ruchliwości po rozmrożeniu. Rozmrażanie i oceny plemników po rozmrożeniu wykonano jak w Przykładzie 2 z tym wyjątkiem, że ruchliwość postępową oceniono po 0,5 i 2,0 godzinach inkubacji.
4. Analiza statystyczna. Ogólny opis analiz statystycznych dostarczono w przykładzie 2. Konkretnie, wpływy traktowania oceniono przez osobne analizy wariancji dla każdego czasu inkubacji; model obejmował byka i rozcieńczalnik w plocie głównym i obserwację i związane interakcje w subplocie. Różnice w średnich określono przez test najmniej istotnych różnic.
5. Wyniki. Rozcieńczalnik oddziaływał (P < 0,05) na postępową ruchliwość plemników po 0,5 lub 2 godzinach inkubacji (tabela 7). Przy 0,5 godziny WET plus SDS powodowały niższą ruchliwość niż Tris z SDS. Przy 2 godzinach wszystkie zabiegi z masowo sortowanymi plemnikami były gorsze niż z niesortowanymi plemnikami kontrolnymi. Występowały istotne efekty byka i obserwacji (P < 0,01) przy obu czasach inkubacji, ale nie było interakcji obserwacja x traktowanie.
PL 211 512 B1
T a b e l a 7
Wpływ rozcieńczalnika na postępową ruchliwość po rozmrożeniu (%)
Rozcieńczalnik Inkubacja w 37°C
0,5 h 2 h
Tris (nie sortowany) 42a 41a
Tris bez SDS 40a,b 35b
Tris z SDS 42a 37b
WET bez SDS 40a,b 35b
WETz SDS 38b 35b
S. E.c 1,0 1,2
a,b średnie w kolumnach bez wspólnego wykładnika różnią się (P < 0,05).
c
Zbłąd średniokwadratowy ΛΝΟΥΛ + 75'
6. Wniosek. Włączenie SDS w rozcieńczalnikach Tris lub WET nie poprawiło jakości plemników, jak określono przez wizualną ocenę ruchliwości po rozmrożeniu. Podobne były również wyniki z zastosowaniem rozcieńczalników WET i Tris; stąd WET okazał się tak samo skuteczny jak Tris do kriokonserwacji sortowanych plemników.
P r z y k ł a d 6. Jakość plemników sortowanych przepływowo według płci dla prób terenowych
Cel: ocena jakości sortowanych plemników po rozmrożeniu oparta na integralności akrosomalnej.
1. Pobranie próbki źródłowej. Nasienie od 3 byków zebrano i przygotowano jak opisano w przykładzie 1A.
2. Sposoby. Sortowane i niesortowane plemniki kontrolne z tego samego ejakulatu barwiono, przetwarzano i sortowano jak w Przykładzie 2 z tym wyjątkiem, że plemniki sortowano według płci przy 90% poziomie czystości. Sortowane plemniki zebrano do objętości w przybliżeniu 20 ml i ochłodzono do 5°C przez 90 minut (0,2°C/min.). Po ochłodzeniu do sortowanych plemników w 15 minutowych odstępach dodano równą objętość rozcieńczalnika żółtko jaja-Tris B (patrz przykład 2) w dwóch równych objętościach. Wirowania i aspirowania supernatantu dokonano jak w przykładzie 5. Po wirowaniu i aspirowaniu do osadu plemników dodano rozcieńczalnik żółtko jaja-Tris zawierający 6% glicerolu (obj./obj.), doprowadzając stężenie plemników do około 20 x 106/ml. Zamrażanie i rozmrażanie przeprowadzono jak opisano w przykładzie 2, z tym wyjątkiem, że czas równoważenia wynosił 3 godziny.
3. Ocena ruchliwości po rozmrożeniu. Wizualną ocenę odsetka plemników z postępową ruchliwością w 37°C wykonano w przybliżeniu 10 minut po rozmrożeniu. Integralność akrosomalna plemników oceniono stosując różnicową mikroskopię interferencyjno-kontrastową (x 1000) po 2 godzinach inkubacji w 37°C. Plemniki poddano działaniu 40 mM fluorku sodu, sporządzono mokry wymaz i zbadano 100 plemników na traktowanie. Akrosomy sklasyfikowano jako: (a) akrosomy nienaruszone, (b) akrosomy obrzmiałe lub uszkodzone lub (c) akrosomy nieprawidłowe (nienienaruszone).
4. Analiza statystyczna. Analizowane dane pochodziły z 19 różnych dat mrożenia od 3 byków stosowanych w próbach terenowych. Wpływy traktowań (sortowane vs. kontrola) oceniono przez analizę wariancji z bykami jako efektem ustalonym.
5. Wyniki. Odsetek plemników o postępowej ruchliwości po rozmrożeniu był znacznie wyższy (P < 0,05) dla niesortowanych plemników (50%) niż dla sortowanych (46%; tabela 8), pomimo usunięcia martwych plemników podczas sortowania. Jednak odsetek plemników z nienaruszonym akrosomem nie różnił się. Sortowanie zwiększało odsetek plemników o brakującym akrosomie, ale również zmniejszało odsetek plemników z uszkodzonym akrosomem, w stosunku do kontrolnych plemników (P < 0,05). Wśród byków występowały istotne różnice w odsetku nienaruszonych akrosomów (P < 0,05), odsetku nie nienaruszonych akrosomów (P < 0,01) i postępowej ruchliwości po rozmrożeniu (P < 0,01). Występował efekt byk x sortowanie dla ruchliwości po rozmrożeniu (p < 0,01), ale nie dla innych odpowiedzi. Od byków A i B różnice w ruchliwości po rozmrożeniu między sortowanymi i niesortowanymi plemnikami były bliskie zeru; dla byka C plemniki sortowane miały ruchliwość o 10 punktów procentowych (19%) niższą niż plemniki kontrolne.
PL 211 512 B1
T a b e l a 8
Wpływ sortowania na ruchliwość po rozmrożeniu (%) i stan akrosomu (%)
Stan akrosomu
Nienaruszony Uszkodzony Nienaruszony Ruchliwość po rozmrożeniu
Kontrola 64a 20a 15a 50a
Sortowane 65a 14b 21b 46b
Kolumnowe średnie z różnymi wykładnikami różnią się (P < 0,05).
6. Wniosek. Wizualne oceny postępowej ruchliwości dla sortowanych, mrożonych plemników średnio były nieznacznie niższe (4 punkty procentowe; 8%) niż dla plemników kontrolnych, chociaż dla jednego byka różnica ta była większa. Ocen tych dokonano w przybliżeniu 10 minut po rozmrożeniu. Mała średnia różnica jest zgodna z różnicą dla nie-nienaruszonych akrosomów po 2 godzinach inkubacji. Plemniki z uszkodzonym lub nieprawidłowym akrosomem są prawdopodobnie nieruchliwe. Wzrost odsetka plemników z nienaruszonym akrosomem dla sortowanych próbek, wskazuje na uszkodzenie związane z sortowaniem lub z kriokonserwacją przed lub po aktualnym sortowaniu. Przypuszczalnie sortowanie przekształca uszkodzone akrosomy w akrosomy nieprawidłowe. W oparciu o standardowe procedury oceny jakości nasienia nie istnieją podstawy do przypuszczenia, że dla większości byków potencjał zapładniający tych przepływowo sortowanych plemników mógłby być poważnie zagrożony.
P r z y k ł a d 7. Selekcja według płci i kriokonserwacja plemników byka z użyciem rozcieńczalnika 20% żółtko jaja-Tris
Cel: Dostarczenie protokołu kriokonserwacji przepływowo sortowanych plemników.
1. Pobranie i oszacowanie ejakulatu. Ejakulaty pobrano i przygotowano jak opisano w przykładzie 1A. Wybrano ejakulaty od byków z plemnikami o prawidłowej morfologii > 75%. Oszacowano wizualnie odsetek plemników o postępowej ruchliwości (najlepsze do sortowania są ejakulaty z ruchliwością postępową > 60%). Do surowego nasienia dodano następujące antybiotyki: tylozynę w końcowym stężeniu 100 μg/ml, gentamycynę w końcowym stężeniu 500 μg/ml i linkospektynę w końcowym stężeniu 300/600 μg/ml.
2. Barwienie i przygotowanie do sortowania. Po dodaniu antybiotyków do próbki surowego nasienia odczekano 15-20 minut przed barwieniem. Barwienie próbek opisano w przykładzie 2.
3. Sortowanie. Sortowano plemniki zarówno z chromosomem X jak i Y, przy ustawieniu bramek sortowania na 90% czystości. Plemniki sortowano do 50 ml probówek Falcona zawierających 2 ml frakcji A rozcieńczalnika 20% żółtko jaja-Tris (patrz przykład 2), aż każda probówka zawierała maksimum 20 ml objętości (lub maksimum 2 godziny na sortowanie), a końcowe stężenie sortowanych 5 plemników wynosiło 6 x 105/ml. Odnotowano, że dodatkowy bufor wychwytujący-frakcja A-20% żółtko jaja-Tris trzeba dodać po sortowaniu i przed chłodzeniem, tak, że końcowy procent żółtka jaja wynosi przynajmniej 3%.
4. Przygotowanie do zamrażania. Po sortowaniu, chłodzono sortowane próbki do 5°C przez okres 90 minut. Po schłodzeniu dodano frakcję B rozcieńczalnika 20% żółtko jaja-Tris (patrz przykład 2) stopniowo (2 x) w 15 minutowych odstępach. Końcowa objętość frakcji B rozcieńczalnika Tris dodanego do próbki plemników powinna być równa objętości frakcji A rozcieńczalnika Tris. Całkowita objętość próbki plemników po dodaniu frakcji B rozcieńczalnika Tris nie powinna przekraczać 27 ml całkowitej objętości. Po dodaniu do próbki plemników frakcji B rozcieńczalnika Tris, próbkę zagęszczono przez 20 minutowe wirowanie przy 850 x g. Zaaspirowano supernatant pozostawiając w przybliżeniu 150 μl osadu plemników. Plemniki ponownie zawieszono i spulowano plemniki od każdego indywidualnego byka.
5. Zamrażanie. Dodano kompletny rozcieńczalnik żółtko jaja-Tris (6% glicerol) do osiągnięcia końcowego stężenia plemników 20 x 106/ml. Rozrzedzone plemniki do zamrożenia umieszczano w 0,25 ml słomkach z polichlorku winylu, jak opisano w przykładzie 2.
P r z y k ł a d 8. Ocena płodności zamrożonych plemników byków przepływowo sortowanych w badaniach terenowych
Materiały i metody
Zbiórka i obróbka nasienia
PL 211 512 B1
Nasienie od młodych byków o nieznanej płodności zebrano za pomocą sztucznej pochwy (patrz przykład 1A). Po określeniu stężenia nasienia spektrofotometrem i subiektywnej ocenie postępowej ruchliwości plemników, nasienie poddano obróbce i sortowano plemniki jak opisano w przykładzie 2, z tym wyjątkiem, że plemniki sortowano według płci przy 90% czystości stosując moc padającą lasera około 135 do około 150 mW. Obróbkę i zamrożenie przeprowadzono jak w przykładzie 2, z tym wyjątkiem, że czas równoważenia wynosił około 3 godzin. Do ciekłego nasienia w trzech próbach terenowych zastosowano uniwersalny rozcieńczalnik Cornella (Seidel G. E. Jr., Theriogenology 1997; 48: 1255-1264). Do zamrożonych plemników w próbach terenowych 2 i 3 zastosowano rozcieńczalnik: 2,9% cytrynian sodu + 20% żółtko jaja o końcowym stężeniu glicerolu 7% (patrz przykład 1). Do prób terenowych 4 do 11 plemniki zamrożono w rozcieńczalniku opartym na Tris złożonym z 200 mM Tris, 65 mM kwasu cytrynowego, 56 mM fruktozy, 20% żółtka jaja i końcowego stężenia glicerolu 6% (patrz przykład 2). Płynem osłonowym zastosowanym w cytometrii przepływowej był 2,9% cytrynian sodu (patrz przykład 4) dla próby 1, 2 i 3 i bufor Tris dla pozostałych prób (patrz przykład 2).
Plemniki umieszczono w 0,25 ml słomkach French w słupkach tak małych jak 50 μI w środku słomki. W celu zminimalizowania efektu rozrzedzenia stosowano małe objętości, które zawierały przynajmniej 107 plemników/ml, W większości prób najpierw aspirowano do słomki słupek rozcieńczalnika bez plemników w celu zmoczenia bawełnianej zatyczki, następnie mały słupek powietrza i następnie seksowane plemniki. Gdy plemniki zamrożono, jedną słomkę z każdej serii rozmrażano w wodzie o 35°C przez 30 sekund dla kontroli jakości, a serie z ruchliwością postępową po rozmrożeniu mniejszą niż 25% odrzucano. Próbki seksowanych plemników z każdej serii sonikowano i analizowano cytometrią przepływową w celu określenia dokładności seksowania.
Hodowla jałówek i sztuczna inseminacja
Wykorzystane jałówki pochodziły z 6 bardzo rozproszonych jednostek produkcyjnych o różnych praktykach hodowlanych. Sezonowe i hodowlane różnice przyczyniały się dodatkowo do różnorodności doświadczeń (tabela 9). W miarę możliwości traktowania kontrole były systematycznie modyfikowane w obrębie byków, w obrębie inseminatorów, gdy jałówki wchodziły do zabudowań, w których prowadzono inseminację. Ruję synchronizowano jednym z 4 sposobów (tabela 9): (1) podawanie 500 mg octanu melengesterolu (MGA) dziennie w 2,3 kg zboża przez 14 dni, po czym iniekcja domięśniowa 25 mg prostaglandyny F2α, (Lutalyse, Upjohn, Kalamazoo, MI, USA) 17, 18 lub 19 dni po ostatnim dniu podawania MGA (MGA/PG); (2) pojedyncza iniekcja 25 mg prostaglandyny F2α (PG); (3) 20 lub 25 mg prostaglandyny F2α wstrzykniętej domięśniowo w odstępach 12-dniowych (PG/PG) lub (4) 50 lub 100 Tg GnRH wstrzykniętych domięśniowo, a następnie 25 mg prostaglandyny F2α 7 dni później (GnRH/PG). Jałówki poddawano wizualnej inspekcji w celu oceny stanu rui rano i wieczorem, ale inseminacji dokonywano tylko wieczorami po 16:00, w przybliżeniu 1/2 lub 1 dzień po rozpoczęciu rui. Inseminacji dokonywano zarówno konwencjonalnie do trzonu macicy lub po połowie do każdego rogu macicy stosując osłonki do nietraumatycznego transferu embrionu (IMV, Minneapolis, MN, USA). W drugim przypadku nasienie złożono za krzywizną większą rogu macicy tak daleko do przodu, jak można to było przeprowadzić bez urazu, identycznie jak niechirurgicznym transferem embrionu. W większości przypadków nasienie złożono między trzecim przednim a środkowym rogiem. Większość doświadczeń obejmowała inseminacje do trzonu macicy kontrolnego zamrożonego nasienia 20 lub 40 x 106 plemników/dawkę od tych samych byków, które wykorzystano do sortowania plemników według płci („seksowanie”). Kontrola ta posłużyła za złożone oszacowanie wewnętrznej, prawidłowej płodności jałówek w konkretnych warunkach próby terenowej, jak również płodności byków i wprawy inseminatorów. Niektóre próby obejmowały również niską dawkę kontrolnej nieseksowanej grupy kontrolnej. Czasami liczbę kontrolnych inseminacji planowano na 1/2 lub 2/3 liczby stosowanej dla każdego traktowania w celu otrzymania więcej informacji o seksowanych plemnikach. Mrożone seksowane plemniki i plemniki kontrolne rozmrażano przez 20 do 30 sekund w kąpieli wodnej o 35 do 37°C. Różne inne szczegóły podsumowano w tabeli 9. Ciążę diagnozowano ultrasonograficznie 28 do 37 dnia po inseminacji i/lub 56 do 92 dnia po inseminacji, w którym to czasie w większości prób określono płeć płodu, jak opisali Curran, S., Theriogenology 1991; 36: 809-814, bez wiedzy operatora o tym czy inseminacji dokonano nasieniem poddanym traktowaniu czy kontrolnym. Płci urodzonych cieląt były prawie identyczne z diagnozą płci płodu. Dane analizowano w teście chi-kwadrat z jednym stopniem swobody, Z poprawką na ciągłość; jeżeli nie wyszczególniono testów 1-stronnych, to zastosowano testy 2-stronne. Mniej niż 5% inseminacji wycofano z powodu błędów w zabiegu inseminacyjnym, wstępującej infekcji dróg rodnych, niemożności przejścia szyjki, itp. Decyzje o wycofaniu zwierząt z doświadczeń podejmowano krótko po inseminacji i nigdy w oparciu o diagnozę ciąży.
PL 211 512 B1
T a b e l a 9
Proceduralne szczegóły prób terenowych
Próba Daty insemi- nacji Rasy jałówek Wykorzystane byki Insemina- torzy Synchronizacja rui Uwagi
1 5/20-23 1997 Angus N1, N2, AN4 A, B MGA/PG Obejmowała kontrole o niskiej dawce
2 2/18-5/22 1998 Angus mieszaniec N3, N4, N5, N6 C, D PG/PG Niska dawka, ale kontrole o normalnej dawce; niektóre jałówki ciężarne i po poronieniu przy synchronizacji
3 6/2-6/5 1998 Angus AN4, AN5, N7, N8 B, D MGA/PG
4 2/10-13 1999 Holstein J2, J4 C, D PG Błoto, śnieg, wiatr i zimno, ulewny deszcz
5 2/24-26 1999 Holstein J2, J4, J5 C, B, D PG/PG
6 4/14-16 1999 Holstein J2, J3, J4, J5 C, D PG Niektóre jałówki wycofano z reprodukcji
7 4/27-5/1 1999 Hereford & Angus mieszaniec AN1, AN4 C MGA/PG Nasienie 1 byka ekspediowano 6 godzin przed sortowaniem; ciężka pogoda
8 4/21-23 1999 Angus mieszaniec H1, H2 E MGA/PG Jałówki pastwiskowe
9 5/5-8 1999 Czerwony Angus AR1, AR2 C, F MGA/PG
10 5/31-6/2 1999 Angus AN4, AN7, AN8 B, D GnRH/PG
11 7/28-30 1999 Holstein H2, H3 C, D PG/PG Pierwsza replikacja możliwa w znacznie większej próbie
Wyniki i omówienie
Przedstawione dane pochodzą z 11 kolejnych, heterogennych prób terenowych, ograniczonych przez aspekty logistyczne badań, takie jak posiadanie byków dopasowanych do potrzeb genetycznych stada, niedostępność informacji o płodności byków, ograniczona liczba jałówek, niedostępność tych samych inseminatorów w próbach, ciężka pogoda w niektórych próbach, ograniczona ilość seksowanego nasienia we wcześniejszych próbach, 2 grupy jałówek, u których stwierdzono ciążę do około 55 dni od czasu synchronizacji rui, itp. W każdej próbie brało udział do 4 byków i 3 inseminatorów; umożliwiło to próbkowanie populacji w celu zagwarantowania, że wyniki mają zastosowanie nie tylko dla jednego byka czy technika; jednak uzyskano niedostateczne dane do precyzyjnej oceny różnic w płodności pomiędzy bykami.
Większość grup jałówek pochodziło ze stad rozpłodowych zlokalizowanych 140 do 250 km od naszego laboratorium. Nie występowały istotne różnice we wskaźniku ciąż między inseminatorami w dowolnej próbie, ale liczby rozpłodów na inseminatora były niskie i różnice mogłyby być wykryte przy większej liczbie inseminacji.
W próbach nie porównywano sposobów synchronizacji rui, zatem niemożliwe było porównanie wskaźnika ciąż między tymi sposobami. Wskaźniki ciąż okazały się zadawalające dla wszystkich czterech zastosowanych procedur synchronizacyjnych.
Ponieważ inseminacje wykonywano raz dziennie, jałówki z wieczorną rują poddawano inseminacji w przybliżeniu 24 godziny po wykryciu rui.
PL 211 512 B1
Wskaźnik ciąż dla tych jałówek zapłodnionych seksowanym nasieniem we wszystkich próbach wynosił 203/414 (49,0%), co nie różni się znacznie (P > 0,1) od tych jałówek z poranną rują, a zatem poddawanych inseminacji pół dnia po wykryciu rui 266/586 (45,4%).
Ta tendencja do wyższej płodności przy późniejszej inseminacji jest zgodna z wynikami innych badań, że korzystne jest dokonywanie późnej inseminacji niż normalnie zalecana przy niższej płodności byków, gdy stosowano małą ilość nasienia lub gdy warunki są poza tym suboptymalne.
Wskaźniki ciąż do traktowań, i gdy jest to osiągalne, płeć płodów lub cieląt przedstawiono w tabelach 10 do 20. Celem było otrzymanie potomstwa płci żeńskiej, z wyjątkiem próby 8; dokładność wynosiła 95%, 83%, 90%, 83%, 82% i 94% odpowiednio w próbach 1, 3, 8, 9, 10 i 11. W pozostałych próbach płeć płodu lub urodzeniowa były niedostępne z powodu braku koordynacji diagnostyki ciąży, niedostępności specjalistów mogących określić płeć płodów i/lub ponieważ cielęta jeszcze się nie urodziły. Nie miało to większego znaczenia, ponieważ głównym celem badania było określenie potencjału zapładniającego sortowanego przepływowo nasienia, z zastosowaniem niskich jego dawek do inseminacji.
Dokładność seksowania może być dostosowana do potencjalnie dowolnego żądanego poziomu między 50 i 95+% przez dostosowanie parametrów sortowania. Jednak większą dokładność uzyskuje się przy mniejszej liczbie plemników sortowanych w jednostce czasu, szczególnie dla plemników z chromosomem Y. W rutynowej pracy wystarczająca jest 90% dokładność.
Główne wyniki z każdej próby terenowej będą kolejno podsumowane. Należy zwrócić uwagę, że całkowite liczby plemników są podane w nagłówkach tabeli; liczby plemników z postępową ruchliwością stanowią zwykle 30 do 50% tych wartości. Próba terenowa 1 (tabela 10) potwierdza, że wskaźnik ciąż przy inseminacji do rogu macicy z zastosowaniem małej liczby nieseksowanych plemników był podobny do kontroli z normalną liczbą plemników.
Wskaźnik ciąż 64 do 67 dnia przy zastosowaniu niemrożonego seksowanego nasienia (42%) wynosił 12 punktów procentowych poniżej ciekłej nieseksowanej kontroli z nasieniem rozrzedzonym, barwionym i wirowanym identycznie jak nasienie sortowane.
Dokładność seksowania wynosiła 95%; płeć cieląt urodzonych po zapłodnieniu nasieniem seksowanym dokładnie odpowiadała diagnozowanej płci płodu; wystąpiła jedna pomyłka w określeniu płci płodu kontroli.
Nie było poronień między 2 miesiącem a końcem ciąży i wszystkie 19 cieląt poczętych w wyniku traktowania seksowanym nasieniem było normalnych i przeżyło.
Przy traktowaniu seksowanym nasieniem determinującym wskaźniki 2-miesięcznych ciąż dla byków N1, N2 i N3 wynosiły odpowiednio 41, 44 i 40%; 39% (13/33) jałówek z rują poranną i 50% (6/12) z rują wieczorną stało się cielnymi.
T a b e l a 10
Wyniki próby terenowej 1 - jałówki Angus z Wyoming, 1997
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 31 do 33 Liczba ciąż dzień 64 do 67 Liczba cieląt płci żeńskiej
Seksowane plemniki, 5°C/rogi 3 x 105 45 20 (44%) 19 (42%) 18 (95%)a
Plemniki kontrolne, 5°C/rogi 3 x 105 28 15 (54%) 15 (54%) 5 (53%)b
Plemniki kontrolne mrożone/trzon 40 x 106 29 16 (55%) 15 (52%) 11 (73%)a,b
a,b Wskaźniki płci bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,02).
W próbie terenowej 2 (tabela 11) dostarczono pierwszy dowód, że wyniki z seksowanym zamrożonym nasieniem, są podobne jak z niemrożonym seksowanym nasieniem, jeżeli zrobi się poprawkę na liczbę plemników, które nie przeżyły kriokonserwacji. Nie stwierdzono również różnicy we wskaźnikach ciąż między seksowanym nasieniem przechowywanym w 5 versus 18°C.
Wskaźniki ciąż przy 2 + miesiącach po inseminacji dla nasienia seksowanego od indywidualnych byków mieściły się w zakresie od 22 do 42% ciąż (P > 0,05).
Strata embrionów między 1 a 2 miesiącem ciąży była podobna dla ciąży będących wynikiem inseminacji seksowanym nasieniem i kontrolnym.
Z tej próby były dostępne dane cielenia od 39 jałówek; każda z tych jałówek (30 ciąż będących efektem inseminacji z użyciem seksowanego nasienia, 9 kontroli) cielna w 2 miesiącu ocieliła się po ciąży prawidłowej długości.
PL 211 512 B1
T a b e l a 11
Wyniki próby terenowej 2 - jałówki Crossbred w Kolorado, 1998
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 30 do 35a Liczba ciąż dzień 59 do 92a
Plemniki kontrolne, 5°C/rogi 5 x 105 58 27 (47%) 24 (41%)
Seksowane plemniki, 5°C/rogi 5 x 105 51 17(33%) 16 (31%)
Seksowane plemniki, 18°C/rogi 5 x 105 46 16 (35%) 12 (26%)
Plemniki kontrolne mrożone/rogi 1 x 106 87 29 (33%) 28 (32%)
a bez znacznych różnic, χ2.
Próba terenowa 3 potwierdziła, że seksowane zamrożone nasienie daje racjonalne wskaźniki ciąż. Ponownie potwierdzono dokładność seksowania nasienia; jednak wystąpiły 4 błędy w określeniu płci płodów w stosunku do narodzonych cieląt. Przedstawiono aktualną płeć urodzonych cieląt. I znów nie było poronień między 2 miesiącem a końcem ciąży. Obliczone średnie wskaźniki ciąż dla seksowanego i niezamrożonego nasienia i dla seksowanego i zamrożonego nasienia dla byków N8, N9, AN5 i AN4 wynosiły odpowiednio 24, 31, 50 i 60% (P < 0,1).
T a b e l a 12
Wyniki próby terenowej 3 - jałówki Angus w Wyoming, 1998
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 62 do 65 Liczba cieląt płci żeńskiej
Seksowane plemniki seksowane 18°C/rogi 5 x 105 37 11 (30%)a 18 (91%)a
Seksowane plemniki seksowane, mrożone/rogi 1 x 106 35 18 (51%)a,b 14(78%)c
Plemniki kontrolne mrożone/trzon 40 x 106 37 27 (73%)b 16 (59%)d
a,b średnie bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,05).
c,d odsetek cieląt płci żeńskiej z zabiegów z nasieniem seksowanym (83%) różnił się od grupy kontrolnej, P < 0,05, 1-stronny, χ2.
4, 5 i 6 próbę terenową (tabele 13, 14, 15) wykonano w tym samym miejscu z trzema różnymi grupami jałówek. Niestety, nie było możliwe powtórzenie każdej próby podobnie z powodu ograniczeń prób terenowych, takich jak harmonogram personelu, dostępność seksowanego nasienia od każdego byka, itp. Znaczne różnice wskaźników ciąż między próbami 5 a 6 wskazują na różne warunki prób. Niektóre jałówki w próbie 6 były na zbyciu, ponieważ nie udało się u nich uzyskać ciąży po miesiącu naturalnego krycia. W warunkach tych prób wskaźniki ciąż były bardzo podobne - w zakresie 1,5 a 3,0 x 106 seksowanych, zamrożonych plemników/dawkę. Ponadto, nie występowały korzyści z inseminacji do rogu macicy. Nie było znacznych różnic (P > 0,05) we wskaźnikach ciąż wśród byków z wyjątkiem próby 5, w której wskaźnik ciąż dla J2, 20/28 (71%) był wyższy niż J4, 15/39 (38%) (P < 0,05). Różnica ta nie była stała w kolejnych próbach, ponieważ J4 miał liczbowo ale nieznacznie (P > 0,1) wyższe wskaźniki ciąż niż J2 w próbach 4 i 6.
T a b e l a 13
Wyniki próby terenowej 4 - jałówki Holstein w Kolorado, 1999
Traktowanie g/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 30 do 33 Liczba ciąż dzień 64 do 67*
Seksowane plemniki - seksowane, zamrożone/trzon 1,5 x 106 55 36 (65%)a,b 36 (65%)a,b
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 3 x 106 52 27 (52%)a 26 (50%)a
Plemniki kontrolne mrożone/trzon 20 x 106 55 45 (82%)b 43 (78%)b
a,b średnie bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,01).
* Sześć ciężarnych jałówek w 30 do 33 dniu sprzedano przed drugą diagnostyką ciąży; przyjęto, że ciąże u tych jałówek przetrwały.
PL 211 512 B1
T a b e l a 14
Wyniki próby terenowej 5 - jałówki Holstein w Kolorado, 1999
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 33 do 35 Liczba ciąż dzień 60 do 62a
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 1,5 x 106 23 12 (52%) 12(52%)
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 3 x 106 25 15(60%) 14(56%)a
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 1,5 x 106 25 15(60%) 12 (48%)
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 3 x 106 25 17(68%) 15 (60%)
Plemniki kontrolne, mrożone/trzon 20 x 106 30 20 (67%) 19 (63%)
a Bez znacznych różnic
T a b e l a 15
Wyniki 6 próby terenowej - jałówki Holstein w Kolorado, 1999
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 31 do 34 Liczba ciąż dzień 60 do 63
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 1,5 x 106 27 11 (41%)a 9 (33%)a
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 3 x 106 25 10 (40%)a 9 (36%)a
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 1,5 x 106 24 8 (33%)a 7 (29%)a
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 3 x 106 24 10 (42%)a 8 (33%)a
Plemniki kontrolne, mrożone/trzon 20 x 106 24 18 (75%)b 17 (71%)b
a,b średnie bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,05).
W 7 próbie (tabela 16) dostępny był tylko jeden inseminator z powodu zmian w planowaniu. Jest to jedyna próba pokazująca przekonujące korzyści inseminacji do rogu macicy nad inseminacją do trzonu macicy.
Dla tego inseminatora w warunkach próby 55% więcej jałówek (22 punkty procentowe) było ciężarnych po zastosowaniu seksowanego nasienia, zamrożonego, umieszczonego w rogach macicy, a nie w trzonie macicy.
Prawdziwa różnica może być mniejsza, ponieważ występował szeroki przedział ufności dla tych średnich. We wszystkich pozostałych próbach (5, 6, 9 i 11), w których porównywano inseminację do trzonu i do rogów macicy, wskaźniki ciąż były bardzo podobne dla obu sposobów dla tego technika, jak również dla innych techników.
Nasienie od jednego z byków zastosowane w próbie 7 przewieziono bez rozrzedzenia drogą powietrzną z Montany w izolowanym pojemniku w ~ 20°C przed sortowaniem; czas przewozu wynosił 6 godzin.
Wskaźniki ciąż dla seksowanego nasienia od dwóch byków były rzeczywiście identyczne, 49% dla nieprzewożonego nasienia i 52% dla przewożonego nasienia. Nasienia nie rozrzedzano rozcieńczalnikiem i nie chłodzono do przewozu, ponieważ właściwości barwienia nasienia Hoechst 33342 zmieniały się pod wpływem rozrzedzenia rozcieńczalnikami.
Ponadto, w innych badaniach (patrz przykład 4) stwierdzono, że przechowywanie czystego nasienia w temperaturze otoczenia między pobraniem a sortowaniem przepływowym jest lepsze niż jego rozrzedzenie.
T a b e l a 16
Wyniki próby terenowej 7 - jałówki Crossbred beef w Kolorado, 1999
T raktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 33 do 35
Seksowane plemniki, zamrożone/trzon 1,5 x 106 86 34 (40%)a
Seksowane plemniki, zamrożone/trzon 1,5 x 106 86 53 (62%)b
Seksowane plemniki, zamrożone/rogi 20 x 106 35 18 (51%)a,b
a,b średnie bez wspólnych wykładników różnią się (P < 0,01).
PL 211 512 B1
Próba terenowa 8 (tabela 17) dotyczyła jałówek „feedlot”, u których nie doszło do implantacji z dużymi czynnikami promocyjnymi; w okresie zdiagnozowanej ciąży poroniły, tak więc dane dotyczące cielenia nie były dostępne. Ten eksperyment pokazał, że skuteczne potomstwa seksowane także może być ukierunkowane na płeć męską. Wskaźniki ciąż dla dwóch byków wynosiły 50 i 61%.
T a b e l a 17
Wyniki próby terenowej 8 - jałówki Angus w Nebrasce, 1999
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąża dzień 74 do 76 Liczba płodów płci męskiej
Seksowane plemniki, zamrożone, laser 72 mW/trzon 1 x 106 18 7 (39%) 6 (86%)
Seksowane plemniki, zamrożone, laser 135 mW/trzon 1 x 106 18 13 (78%) 12 (92%)
a Bez znacznych różnic.
Próba terenowa 9 (tabela 18) była jedyną próbą wykazującą przekonywującą przewagę dawki 3,0 versus dawka 1,5 x 106) seksowanych, zamrożonych plemników/dawka inseminacyjna.
Przewaga ta była prawdziwa dla obu inseminatorów.
Wskaźniki ciąż dla seksowanych plemników od 2 byków wynosiły 62 i 75%.
T a b e l a 18
Wyniki próby terenowej 9 - jałówki Red Angus w Nebrasce, 1999
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 60 do 63a Liczba płodów płci żeńskiej
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 1,5 x 106 15 8 (53%) 7 (88%)
Seksowane plemniki płci, mrożone/trzon 3 x 106 14 12 (86%) 9 (75%)
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 1,5 x 106 16 9 (56%) 7 (78%)
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 3 x 106 16 12 (75%) 11 (92%)
Plemniki kontrolne mrożone/trzon 20 x 106 30 21 (70%) 13 (62%)
a 3,0 x 106 seksowanych plemników miało wyższy wskaźnik ciąż (80%) niż 1,5 x 106 (55%), P < 0,05, 1-stronny χ2.
Wskaźniki ciąż w 10 próbie terenowej (tabela 19) z zamrożonym seksowanym nasieniem były podobne do kontroli; dokładność seksowania nasienia w tej próbie wynosiła tylko 82%, co jednak nie stanowi znacznej różnicy wobec docelowej 90% dokładności.
Wskaźniki ciąż dla seksowanego nasienia wynosiły odpowiednio 54, 66 i 50% dla byków AN4,
AN7 i AN8 (P > 0,1).
Osiemnaście jałówek poddanych inseminacji w tej próbie było cielętami pochodzącymi z ciąż po zastosowaniu seksowanego nasienia w próbie terenowej 1.
T a b e l a 19
Wyniki próby terenowej 10 - jałówki Angus w Wyoming, 1999
Traktowanie/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 61 do 63a Liczba płodów płci żeńskiej
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 1 x 106 44 26 (59%) 23 (85%)
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 3 x 106 43 23 (53%) 17 (74%)
Plemniki kontrolne mrożone/trzon 20 x 106 35 20 (57%) 12 (57%)
a Bez znacznych różnic.
PL 211 512 B1
T a b e l a 20
Wyniki próby terenowej 11 - jałówki Holstein w Kolorado, 1999
Zabieg/miejsce Liczba plemników Liczba jałówek Liczba ciąż dzień 28 do 30a Liczba ciąż dzień 56 do 58a,b
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 1 x 106 12 8 (67%) 7 (58%)
Seksowane plemniki, mrożone/trzon 3 x 106 12 6 (50%) 4 (33%)
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 1 x 106 7 4 (57%) 4 (57%)
Seksowane plemniki, mrożone/rogi 3 x 106 7 4 (57%) 4 (57%)
Plemniki kontrolne mrożone/trzon 20 x 106 9 4 (44%) 3 (33%)
a Bez znacznych różnic, χ2.
b 16 z 17 płodów (94%) z zabiegów z zastosowaniem seksowanego nasienia było płci żeńskiej; 2 były zbyt głęboko w jamie trzonu do ultrasonograficznego określenia płci.
Dane z prób, w których zabiegi były identyczne, połączono, z tym wyjątkiem, że spulowano dawki 1 x 10 i 1,5 x 106 plemników (tabela 21).
T a b e l a 21
Podsumowanie połączonych prób z zamrożonym seksowanym nasieniem i zamrożonymi kontrolami
Połączone próby Liczba plemników/miejsce Liczba jałówek Liczba ciąż
5, 6, 9, 11 1,0-1,5 x 106/trzon 77 36 (47%)
3,0 x 106/trzon 76 38 (50%)
1,0-1,5 x 106/rogi 72 32 (44%)
3,0 x 106/rogi 72 39 (54%)
20 x 106/trzon, kontrola 93 61 (66%)
4, 5, 6, 9, 10, 11 1,0-1,5 x 106/trzon 176 98 (56%)
3,0 x 106/trzon 171 88 (51%)
20 x 106/trzon, kontrola 183 124(68%)
5, 6, 7, 9, 11 1,5 x 106/trzon 163 70 (43%)
1,5 x 106/róg 158 85 (54%)
20 x 106/trzon, kontrola 128 79 (62%)
Wskaźniki ciąż z seksowanego nasienia determinującego określoną płeć wynosiły generalnie 70-90% kontroli o nieokreślonej płci w doświadczeniach z 7 do 20 razy większą ilością plemników. Różnica ta była mniejsza we wcześniejszych próbach, co mogło być odbiciem wpływu procedur seksowania i przygotowywania nasienia. W niektórych próbach badano ultrasonograficznie ciążę u jałówek zarówno 1, jak i 2 miesiące po inseminacji. Straty ciąż w tym przedziale były podobne (P > 0,1) dla traktowań z seksowanym nasieniem (23/261; 8,8%) w porównaniu z kontrolnym (9/145; 6,2%), co jest miarą tego, że uszkodzenie genetyczne spowodowane seksowaniem jest minimalne. Informacje o cieleniu się otrzymano tylko o kilku ciężarnych jałówkach, ponieważ większość bydła z wcześniejszych prób sprzedano, a te z późniejszych prób jeszcze się nie ocieliły. Populacja cieląt wyprodukowana po dzień dzisiejszy z seksowanego nasienia nie różni się od populacji kontrolnej.
Wnioski
Proporcje płci u bydła mogą być zniekształcone do około 90% dla obu płci przez sortowanie nasienia na podstawie zawartości DNA w cytometrze przepływowym/sorterze komórkowym, następnie kriokonserwacji i odpowiednio rutynowej sztucznej inseminacji. Cielęta poczęte z seksowanego nasienia wydają się być normalne. W badaniach tych dla większości byków wskaźniki ciąż z 1,0 do 1,5 x 106 seksowanych, zamrożonych plemników wynosiły 70 do 90% nieseksowanych kontroli z 20 lub 40 x 106 zamrożonych plemników w konwencjonalnej inseminacji. Wyniki te mają zastosowanie w dobrze zarządzanej hodowli jałówek przy dobrze wyszkolonych inseminatorach stosujących właściwie obrobione nasienie. Może istnieć mała przewaga inseminacji seksowanego nasienia dwustronnie do rogów macicy w porównaniu ze standardową inseminacją do trzonu macicy.

Claims (18)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich, znamienny tym, że obejmuje:
    (a) otrzymywanie próbki plemników z wyłączeniem plemników ludzkich;
    (b) dodawanie do próbki plemników początkowego rozcieńczalnika obejmującego fizjologiczne dopuszczalny nośnik i jeden lub więcej z następujących składników:
    i) składnik, który utrzymuje osmolalność i buforuje pH;
    ii) substancję organiczną, która zmniejsza udar chłodowy i zabezpiecza płodność plemników;
    iii) źródło energii, iv) substancję, która ułatwia kapacytację plemników; i
    v) antybiotyk, selekcjonowanie plemników metodą cytometrii przepływowej, z wytworzeniem próbki selekcjonowanych plemników, przy czym plemniki są selekcjonowane według płci, a etapy dodawania i selekcjonowania przeprowadza się w dowolnej kolejności;
    (c) ochłodzenie próbki selekcjonowanych plemników do temperatury 22°C do 5°C przez okres 60 do 240 minut;
    (d) izolowanie plemników ze schłodzonej próbki selekcjonowanych plemników z uzyskaniem schłodzonych izolowanych plemników;
    (e) dodawanie końcowego rozcieńczalnika obejmującego oprócz fizjologicznie dopuszczalnego nośnika i krioprotektanta jeden lub więcej z następujących składników:
    i) składnik, który utrzymuje osmolalność i buforuje pH;
    ii) substancję organiczną, która zmniejsza udar chłodowy i zabezpiecza płodność plemników;
    iii) źródło energii, iv) substancję, która ułatwia kapacytację plemników; i
    v) antybiotyk, do schłodzonych, izolowanych plemników z wytwarzaniem schłodzonej zawiesiny plemników o stężeniu komórek plemników od 1 miliona na mililitr rozcieńczalnika do 300 milionów na mililitr rozcieńczalnika; i (f) mrożenie schłodzonej zawiesiny plemników w temperaturze od 5°C do -100°C.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako próbkę selekcjonowanych plemników stosuje się plemniki ssaka.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że jako próbkę selekcjonowanych plemników stosuje się plemniki bydlęce.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że jako próbkę selekcjonowanych plemników stosuje się plemniki końskie.
  5. 5. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że jako próbkę selekcjonowanych plemników stosuje się plemniki świńskie.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że krioprotektant jest wybrany z grupy składającej się z dicukrów, tricukrów i dowolnej ich kombinacji.
  7. 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że krioprotektant jest wybrany z grupy składającej się z glicerolu, dimetylosulfotlenku, glikolu etylenowego, glikolu propylenowego i dowolnej ich kombinacji.
  8. 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że składnik utrzymujący osmolalność i buforujący pH jest wybrany z grupy składającej się z buforu, którym jest sól, buforu zawierającego węglowodan i dowolnej ich kombinacji.
  9. 9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że składnik utrzymujący osmolalność i buforujący pH jest wybrany z grupy składającej się z cytrynianu sodu, Tris[hydroksymetylo]aminometanu, kwasu N-Tris[hydroksymetylo]metylo-2-aminoetanosulfonowego, glutaminianu sodowego, mleka, podłoża buforowanego HEPES i dowolnej ich kombinacji.
  10. 10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że substancja organiczna jest wybrana z grupy składającej się z żółtka jaja, ekstraktu z żółtka jaja, mleka, ekstraktu z mleka, kazeiny, albuminy, lecytyny i dowolnej ich kombinacji.
  11. 11. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że źródłem energii jest monosacharyd wybrany z grupy składającej się z glukozy, fruktozy, mannozy i dowolnej ich kombinacji.
    PL 211 512 B1
  12. 12. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że antybiotyk jest wybrany składającej się z tylozyny, gentamycyny, linkomycyny, linkospektyny, spektynomycyny, penicyliny, streptomycyny i dowolnej ich kombinacji.
  13. 13. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że po dodaniu końcowego rozcieńczalnika próbka nasienia i zawiesina plemników obejmuje odpowiednio glicerol, cytrynian sodu, Tris[hydroksymetylo]aminometan, żółtko jaja, fruktozę i jeden lub więcej antybiotyków.
  14. 14. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że po dodaniu końcowego rozcieńczalnika próbka plemników i zawiesina plemników, każda, obejmuje glicerol, cytrynian sodu, żółtko jaja i jeden lub więcej antybiotyków.
  15. 15. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że po dodaniu końcowego rozcieńczalnika ta próbka plemników i zawiesina plemników, każda, zawiera glicerol, żółtko jaja, mleko, fruktozę i jeden lub więcej antybiotyków.
  16. 16. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że rozcieńczalnik ma pH w zakresie 6,5 do 7,5.
  17. 17. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że plemniki są izolowane z próbki selekcjonowanych plemników przez wirowanie.
  18. 18. Sposób według zastrz. 17, znamienny tym, że wirowanie umożliwia co najmniej 50% do 90% odzysk plemników.
PL355853A 1999-11-24 2000-11-22 Sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich PL211512B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US16742399P 1999-11-24 1999-11-24
US09/478,299 US7208265B1 (en) 1999-11-24 2000-01-05 Method of cryopreserving selected sperm cells

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL355853A1 PL355853A1 (pl) 2004-05-31
PL211512B1 true PL211512B1 (pl) 2012-05-31

Family

ID=26863156

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL355853A PL211512B1 (pl) 1999-11-24 2000-11-22 Sposób kriokonserwacji plemników z wyłączeniem plemników ludzkich

Country Status (25)

Country Link
US (6) US7208265B1 (pl)
EP (2) EP1257168B1 (pl)
JP (1) JP2003530312A (pl)
KR (1) KR100757753B1 (pl)
CN (1) CN100367849C (pl)
AR (1) AR026572A1 (pl)
AT (1) ATE288197T1 (pl)
AU (1) AU782919B2 (pl)
BG (1) BG106731A (pl)
BR (1) BR0016049A (pl)
CA (1) CA2391370C (pl)
CZ (1) CZ20021770A3 (pl)
DE (1) DE60017945T2 (pl)
DK (1) DK1557087T3 (pl)
EA (1) EA200200593A1 (pl)
EE (1) EE200200264A (pl)
ES (2) ES2237473T3 (pl)
HU (1) HUP0203920A2 (pl)
IL (1) IL149802A0 (pl)
MX (2) MX338434B (pl)
NZ (2) NZ519078A (pl)
PL (1) PL211512B1 (pl)
SK (1) SK7222002A3 (pl)
UY (1) UY26449A1 (pl)
WO (1) WO2001037655A1 (pl)

Families Citing this family (107)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA2279574C (en) 1997-01-31 2007-07-24 The Horticulture & Food Research Institute Of New Zealand Ltd. Optical apparatus
US6149867A (en) 1997-12-31 2000-11-21 Xy, Inc. Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm
NZ509434A (en) 1998-07-30 2004-03-26 Univ Colorado State Res Found Equine system for non-surgical artificial insemination
US7208265B1 (en) 1999-11-24 2007-04-24 Xy, Inc. Method of cryopreserving selected sperm cells
CA2408939C (en) 2000-05-09 2011-11-08 Xy, Inc. High purity x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations of spermatozoa
CN1633259A (zh) * 2000-06-12 2005-06-29 Xy公司 利用分离的带x-染色体和带y-染色体的精子群的综合兽群管理系统
MXPA03001069A (es) * 2000-08-10 2004-04-02 Gtc Biotherapeutics Inc Crio-preservacion de esperma.
WO2002043486A1 (en) 2000-11-29 2002-06-06 Xy, Inc. System for in-vitro fertilization with spermatozoa separated into x-chromosome and y-chromosome bearing populations
US7713687B2 (en) 2000-11-29 2010-05-11 Xy, Inc. System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations
KR20030014891A (ko) * 2001-08-13 2003-02-20 (주)베티즌 개 정액 냉각용 및 동결용 조성물, 이를 이용한 개 정액냉각 및 동결 방법 그리고 냉각 및 동결된 정액을 이용한개 인공수정 방법
MXPA05000865A (es) * 2002-07-22 2005-04-28 Xy Inc Sistema para el proceso de celulas espermaticas.
US11243494B2 (en) 2002-07-31 2022-02-08 Abs Global, Inc. Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering
MXPA05001100A (es) * 2002-08-01 2005-04-28 Xy Inc Sistema de separacion de baja presion para celulas de esperma.
US8486618B2 (en) 2002-08-01 2013-07-16 Xy, Llc Heterogeneous inseminate system
US20050229046A1 (en) * 2002-08-02 2005-10-13 Matthias Marke Evaluation of received useful information by the detection of error concealment
MXPA05001654A (es) 2002-08-15 2005-10-18 Xy Inc Citometro de flujo de alta resolucion.
US7169548B2 (en) 2002-09-13 2007-01-30 Xy, Inc. Sperm cell processing and preservation systems
US7335507B2 (en) 2003-03-28 2008-02-26 Monsanto Technology Llc Process for the staining of sperm
MX347048B (es) 2003-03-28 2017-04-07 Inguran Llc * Aparato de muestreo digital y métodos para separar partículas.
ES2541121T3 (es) * 2003-05-15 2015-07-16 Xy, Llc Clasificación eficiente de células haploides por sistemas de citometría de flujo
WO2005042137A2 (en) 2003-10-30 2005-05-12 Cytonome, Inc. Multilayer hydrodynamic sheath flow structure
US20050114915A1 (en) * 2003-11-26 2005-05-26 Vicam L.P. Method for sex biasing spermatozoa
EP1730523B1 (en) 2004-03-29 2010-01-13 Inguran, LLC Use of a composition which regulates oxidation/reduction reactions intracellularly and/or extracellularly in a staining or sorting process of spermatozoa
CN101014350A (zh) * 2004-03-29 2007-08-08 孟山都技术公司 用于授精的精子悬浮液
CA2561661C (en) 2004-03-29 2015-11-24 Monsanto Technology Llc Sperm suspensions for sorting into x or y chromosome-bearing enriched populations
AR049732A1 (es) * 2004-07-22 2006-08-30 Monsanto Co Proceso para enriquecer una poblacion de celulas de esperma
PT1771729E (pt) 2004-07-27 2015-12-31 Beckman Coulter Inc Acentuação da discriminação da citometria de fluxo com transformação geométrica
CN1295956C (zh) * 2004-07-27 2007-01-24 中国水产科学研究院黄海水产研究所 鱼类精子冷冻保存的实用化方法
US7618770B2 (en) * 2005-07-29 2009-11-17 Xy, Inc. Methods and apparatus for reducing protein content in sperm cell extenders
CA2626518A1 (en) * 2005-10-19 2007-04-26 Scott Josephson Improved reproductive management
US8096940B2 (en) * 2005-10-19 2012-01-17 Iversync Ii Llc Reproductive management
WO2008127959A1 (en) * 2007-04-12 2008-10-23 Oxis International, Inc. Ergothioneine and/or its derivatives as a cell preservative
US20080269549A1 (en) * 2007-04-27 2008-10-30 The Jackson Laboratory Method, article, and apparatus for cryopreservation of biological samples
WO2009079456A2 (en) 2007-12-14 2009-06-25 Minitube Of America, Inc. Gender-specific separation of sperm cells and embryos
US9383369B2 (en) * 2008-03-31 2016-07-05 Barb Ariel Cohen Methods for improving fertility and selectivity for desired offspring sex in artificial insemination
US8251887B2 (en) * 2009-01-24 2012-08-28 Xihe Li Reproductive technology of low dose semen production and in vitro/in vitro fertilization in domestic animals
US8512224B2 (en) * 2009-01-24 2013-08-20 Xy, Llc Method of producing an inseminate
EP2361967A1 (en) * 2010-02-26 2011-08-31 Assistance Publique - Hôpitaux de Paris Gametes separation methods, compositions and uses thereof
US20110223586A1 (en) * 2010-03-11 2011-09-15 David Karabinus Optical particle characterization system
US20110223587A1 (en) * 2010-03-11 2011-09-15 Schulman Joseph D Optical particle characterization system
CA2794934A1 (en) * 2010-04-01 2011-10-06 Inguran, Llc Methods and systems for reducing dna fragmentation in a processed sperm sample
US10908066B2 (en) 2010-11-16 2021-02-02 1087 Systems, Inc. Use of vibrational spectroscopy for microfluidic liquid measurement
JP5738314B2 (ja) * 2010-12-01 2015-06-24 一般社団法人家畜改良事業団 人工授精用ストロー
JP2011098972A (ja) * 2011-01-04 2011-05-19 Zenkoku Nogyo Kyodo Kumiai Rengokai 精液希釈液及び希釈精液の保存方法
CA2826544C (en) 2011-02-04 2020-06-30 Cytonome/St, Llc Particle sorting apparatus and method
US9358091B2 (en) 2011-04-18 2016-06-07 Inguran, Llc Two-dimensional bar codes in assisted reproductive technologies
BR112013026790B1 (pt) 2011-04-18 2022-01-04 Inguran, Llc Membros poliméricos e métodos para marcar membros poliméricos
CN102246744A (zh) * 2011-05-03 2011-11-23 陕西省动物研究所 大熊猫精液冷冻保存液及其制备方法
US9781919B2 (en) 2011-06-01 2017-10-10 Inguran, Llc Compositions and methods for improving the quality of processed sperm
CA2837340C (en) 2011-06-01 2019-08-06 Inguran, Llc Compositions and methods for improving the quality of processed sperm
WO2013049631A1 (en) 2011-09-30 2013-04-04 Inguran, Llc Sperm staining and sorting methods
KR101396925B1 (ko) * 2011-11-14 2014-05-20 가천의과학대학교 산학협력단 루코스포리디움 속 미생물 유래 결빙 방지 단백질을 이용한 생식 세포 또는 생체 조직의 동결 보존 방법
JP5980499B2 (ja) * 2011-11-22 2016-08-31 株式会社ピィアイシィ・バイオ 豚人工授精用精液希釈保存物
US11028368B2 (en) 2012-03-14 2021-06-08 Membrane Protective Technologies, Inc. System and substances for cryopreservation of viable cells
KR101399432B1 (ko) 2012-04-30 2014-05-30 한경대학교 산학협력단 미니돼지 정자의 동결보존방법
US9433195B2 (en) 2012-06-06 2016-09-06 Inguran, Llc Methods for increasing genetic progress in a line or breed of swine using sex-selected sperm cells
US9888990B2 (en) 2012-06-06 2018-02-13 Inguran, Llc Methods for use of sex sorted semen to improve genetic management in swine
US10379026B2 (en) 2012-08-29 2019-08-13 Inguran, Llc Cell processing using magnetic particles
DK2890498T3 (en) 2012-08-29 2018-05-22 Inguran Llc MAGNETIC REMOVAL OR IDENTIFICATION OF DAMAGED OR COMPRIMATED CELLS OR CELL STRUCTURES
US10620213B2 (en) 2012-10-05 2020-04-14 Inguran, Llc High pressure sperm sorting and flow cytometer methods
WO2014055111A1 (en) 2012-10-05 2014-04-10 Inguran, Llc Methods of processing sperm for sex sorting
BR112015008582B1 (pt) * 2012-10-18 2021-05-18 Inguran, Llc códigos de barras bidimensionais em tecnologias de reprodução assistida
CN103039433B (zh) * 2012-12-10 2014-08-13 山东天龙牧业科技有限公司 一种用于驴精液冷冻保存的酪蛋白抗冻剂及其制备方法
CN103039434B (zh) * 2012-12-10 2014-08-27 山东天龙牧业科技有限公司 一种用于驴精液冷冻保存的鸭蛋卵黄抗冻剂及其制备方法
CN103858858A (zh) * 2012-12-11 2014-06-18 中国农业大学 马精液稀释液及其制备方法
CN102986651A (zh) * 2012-12-24 2013-03-27 邓凯伟 一种猪精液颗粒冷冻保存稀释和冷冻方法
EP4220124A1 (en) 2013-03-14 2023-08-02 Cytonome/ST, LLC Hydrodynamic focusing apparatus and methods
KR101457526B1 (ko) * 2013-06-15 2014-11-03 (주)나비바이오텍 돼지 정액의 보존성 개선을 위한 희석액 조성물
US8961904B2 (en) 2013-07-16 2015-02-24 Premium Genetics (Uk) Ltd. Microfluidic chip
CL2013002501A1 (es) 2013-08-29 2014-04-11 Univ Austral De Chile Metodo para el enfriamiento y criopreservacion de espermatozoides de un mamífero; diluyentes utilizados en dicho metodo; kit para la inseminación artificial.
CN103493800B (zh) * 2013-09-29 2015-09-16 大连金弘基种畜有限公司 分离精液的冷冻保藏方法
CN103518704B (zh) * 2013-10-14 2015-12-23 武鸣县水产畜牧兽医技术推广站 一种猪精液的保温方法
CN103518703B (zh) * 2013-10-14 2015-08-19 武鸣县水产畜牧兽医技术推广站 一种猪精液稀释剂
US11796449B2 (en) 2013-10-30 2023-10-24 Abs Global, Inc. Microfluidic system and method with focused energy apparatus
ES2825574T3 (es) * 2014-07-09 2021-05-17 Hoffmann La Roche Ajuste del pH para mejorar la recuperación por descongelación de bancos de células
CA2905670A1 (en) 2014-09-26 2016-03-26 Inguran, Llc Sex sorted sperm demonstrating a dose response and methods of producing sex sorted sperm demonstrating a dose response
WO2016064896A1 (en) * 2014-10-20 2016-04-28 University Of Utah Research Foundation Tissue sample processing system and associated methods
WO2016090310A1 (en) 2014-12-05 2016-06-09 Inguran, Llc Cell processing using magnetic particles
SG11201706777QA (en) 2015-02-19 2017-09-28 Premium Genetics (Uk) Ltd Scanning infrared measurement system
JP6932893B2 (ja) * 2016-03-16 2021-09-08 一般社団法人家畜改良事業団 精子用希釈液及びそれを用いた精子の保存方法
CN105660609A (zh) * 2016-04-22 2016-06-15 李志新 一种牛精液保存方法
MD4513C1 (ro) * 2016-11-21 2018-04-30 Общественное Учреждение "Научно-Практический Институт Биотехнологий В Зоотехники И Ветеринарной Медицине" Mediu de protecţie pentru crioconservarea materialului seminal de berbeci
CN110177461B (zh) * 2017-01-20 2022-05-31 英格朗公司 精子处理方法、装置和有关介质组合物
US11819019B2 (en) 2017-12-01 2023-11-21 University Of Saskatchewan Protein-free semen cryopreservation
EP3772937A4 (en) 2018-04-09 2021-12-29 Inguran, LLC Improved sperm nuclei and methods of their manufacture and use
CN108293982A (zh) * 2018-04-10 2018-07-20 公安部南昌警犬基地 一种犬精液冷冻保存稀释液的制备方法及其应用
CN108378022A (zh) * 2018-05-09 2018-08-10 中南大学 一种人类精子冷冻保护剂
BR112020023607A2 (pt) 2018-05-23 2021-02-17 Abs Global, Inc. sistemas e métodos para focalização de partículas em microcanais
CN108684656A (zh) * 2018-06-20 2018-10-23 河南省鼎元种牛育种有限公司 一种牛冻精稀释液及其制备方法
CN109223245B (zh) * 2018-09-26 2021-02-05 江苏农牧科技职业学院 一种适于冷藏的种鹅精子的人工授精方法
US20200208110A1 (en) 2018-11-30 2020-07-02 Cellphire, Inc. PLATELETS LOADED WITH mRNA
EP3886879A4 (en) 2018-11-30 2022-12-07 Cellphire Inc. PLATES AS DELIVERY AGENTS
KR102226182B1 (ko) * 2018-12-14 2021-03-10 대한민국 난황추출물과 유단백추출물을 포함하는 정자의 동결보존용 조성물
WO2020191064A1 (en) 2019-03-19 2020-09-24 Inguran, Llc Method for improved sperm cell populations
JP7212886B2 (ja) * 2019-03-22 2023-01-26 国立研究開発法人産業技術総合研究所 受精用精子液の製造方法及び凍結精子ストローの製造方法
US10982187B2 (en) 2019-03-26 2021-04-20 Genus Plc Bos taurus variety ‘HO840003150607238’ and methods of use thereof
EP3955735A4 (en) 2019-04-18 2023-01-25 ABS Global, Inc. SYSTEM AND METHOD FOR CONTINUOUSLY ADDING CRYOPROTECTOR
WO2020227149A1 (en) 2019-05-03 2020-11-12 Cellphire, Inc. Materials and methods for producing blood products
US11513114B2 (en) * 2019-05-29 2022-11-29 Abs Global, Inc. Kill event optimization
US10975351B2 (en) 2019-06-17 2021-04-13 Abs Global, Inc. Bos taurus variety ‘JE840003146074527’ and methods of use therof
CN114450066A (zh) 2019-08-16 2022-05-06 塞尔菲乐有限公司 作为抗血小板剂逆转剂的血栓小体
US11628439B2 (en) 2020-01-13 2023-04-18 Abs Global, Inc. Single-sheath microfluidic chip
CA3170201A1 (en) 2020-02-04 2021-08-12 Cellphire, Inc. Methods of treating congenital hemophilia with anti-fibrinolytic loaded platelets
WO2021259903A1 (en) 2020-06-22 2021-12-30 Westfälische Wilhelms-Universität Münster Sperm stratification
CN112931490B (zh) * 2021-04-02 2022-03-22 吉林省养蜂科学研究所(吉林省蜂产品质量管理监督站、吉林省蜜蜂遗传资源基因保护中心) 一种蜜蜂精子超低温冷冻保存的方法
CN114214198A (zh) * 2021-12-22 2022-03-22 中溶科技股份有限公司 一种菌种保藏保护剂及其制备方法和应用
WO2024018452A1 (en) 2022-07-18 2024-01-25 Yeda Research And Development Co. Ltd. Albumin protein variants, production thereof and uses of same

Family Cites Families (626)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US34782A (en) * 1862-03-25 Improvement in lamps
US1174875A (en) * 1913-04-24 1916-03-07 Carl Lehr Machine for making wire tacks.
US3005756A (en) 1958-11-14 1961-10-24 Noland L Van Demark Diluter containing carbon dioxide for preserving semen
US3299354A (en) 1962-07-05 1967-01-17 Coulter Electronics Aperture tube structure for particle study apparatus
US3499435A (en) 1967-06-02 1970-03-10 Paul E Rockwell Esophageal probe for use in monitoring
US3547526A (en) 1967-10-26 1970-12-15 Kollsman Instr Corp Optical beam cross-section converter
US3810010A (en) 1968-11-02 1974-05-07 Telefunken Patent Particle analysis method and apparatus wherein liquid containing particles is sucked into a constricted flow path
US3829216A (en) 1968-11-26 1974-08-13 M Persidsky Optical system and method for counting sperm cells
DE1815352C3 (de) 1968-12-18 1975-03-20 Wolfgang Prof. Dr. Dittrich Automatisches MeB- und Zählgerät für die Teilchen einer Dispersion
US4327177A (en) 1969-04-10 1982-04-27 Wallace Shrimpton Method and means for controlling the sex of mammalian offspring and product therefor
US3894529A (en) 1969-04-10 1975-07-15 Bio Controls Inc Method and means for controlling the sex of mammalian offspring and product therefor
US4474875A (en) 1969-04-10 1984-10-02 Wallace Shrimpton Method and means for controlling the sex of mammalian offspring and product therefor
DE1919628C3 (de) 1969-04-18 1975-04-10 Wolfgang Prof. Dr. Dittrich Anordnung zum automatischen Zählen und/oder Klassifizieren von in einem strömungsfähigen Medium dispergierten Teilchen
US3687806A (en) 1969-11-04 1972-08-29 Bio Controls Inc Method for controlling sex of mammalian offspring
US3788744A (en) 1970-01-14 1974-01-29 Bio Physics Systems Inc Method and apparatus for photoanalysis
US3661460A (en) 1970-08-28 1972-05-09 Technicon Instr Method and apparatus for optical analysis of the contents of a sheathed stream
US3816249A (en) 1970-11-23 1974-06-11 B Bhattacharya Universal medium and method for extending the useful life of semen in vitro
US3644128A (en) 1970-12-28 1972-02-22 Stuart Lipner Method of preparing comminuted meat products
US3756459A (en) 1971-01-12 1973-09-04 Damon Corp Method and apparatus for metering fluid utilizing pressure differentials
US3916143A (en) 1971-04-22 1975-10-28 Research Corp Branding living animals
US3791384A (en) 1971-07-15 1974-02-12 Schaumann H Artificial insemination of sows
US3833796A (en) 1971-10-13 1974-09-03 Georgia Tech Res Inst Method and apparatus for chromosome digitizing
BE793185A (fr) 1971-12-23 1973-04-16 Atomic Energy Commission Appareil pour analyser et trier rapidement des particules telles que des cellules biologiques
US3826364A (en) 1972-05-22 1974-07-30 Univ Leland Stanford Junior Particle sorting method and apparatus
US3761941A (en) 1972-10-13 1973-09-25 Mead Corp Phase control for a drop generating and charging system
CA1029833A (en) 1973-02-23 1978-04-18 Hildegarde Goehde Apparatus for the automatic counting and measuring of suspended particles
US3791517A (en) 1973-03-05 1974-02-12 Bio Physics Systems Inc Digital fluidic amplifier particle sorter
US4009260A (en) 1973-04-19 1977-02-22 Schering Aktiengesellschaft Fractionation of sperm
USRE29141E (en) 1973-06-14 1977-02-22 Coulter Electronics, Inc. Apparatus for orienting generally flat particles for sensing
US3893766A (en) 1973-06-14 1975-07-08 Coulter Electronics Apparatus for orienting generally flat particles for slit-scan photometry
US3947093A (en) 1973-06-28 1976-03-30 Canon Kabushiki Kaisha Optical device for producing a minute light beam
US3944917A (en) 1973-08-13 1976-03-16 Coulter Electronics, Inc. Electrical sensing circuitry for particle analyzing device
US3909744A (en) 1973-09-24 1975-09-30 United Technologies Corp Unstable resonator system producing a high irradiance beam in the far field
US3906929A (en) 1973-11-23 1975-09-23 Lynn Lawrence Augspurger Processes for reproduction of cellular bodies
US3854470A (en) * 1973-11-23 1974-12-17 L Augspurger Reproduction processes for cellular bodies
FR2254639B1 (pl) 1973-12-18 1978-06-02 Agronomique Inst Nat Rech
US4070617A (en) 1974-05-08 1978-01-24 Max-Planck-Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. Device for controlling the particle flow in an apparatus for measuring the properties of particles suspended in liquid
US3973196A (en) 1974-05-24 1976-08-03 Coulter Electronics, Inc. Method and apparatus for ejecting a metered amount of particulate sample
US3963606A (en) 1974-06-03 1976-06-15 Coulter Electronics, Inc. Semi-automatic adjusting delay for an electronic particle separator
US3877430A (en) 1974-07-17 1975-04-15 Horst K Wieder Artificial insemination apparatus
US4083957A (en) 1974-07-26 1978-04-11 Lang John L Process for the alteration of the sex-ratio of mammals
US4006360A (en) 1974-08-21 1977-02-01 Block Engineering, Inc. Method of discriminating between dyed particles and background fluorescence of the dye
US3976197A (en) 1974-11-22 1976-08-24 Bhattacharya Bhairab C Thermal convection counter streaming sedimentation method and apparatus for controlling the sex of mammalian offspring
USRE32350E (en) 1974-11-22 1987-02-10 Bhairab C. Bhattacharya Thermal convection counter streaming sedimentation and forced convection galvanization method for controlling the sex of mammalian offspring
US4092229A (en) 1975-12-17 1978-05-30 Bhattacharya Bhairab C Thermal convection counter streaming sedimentation and forced convection galvanization method for controlling the sex of mammalian offspring
US3940943A (en) * 1975-01-22 1976-03-02 The Curators Of The University Of Missouri Multistage freezing system for preservation of biological materials
US4014611A (en) 1975-04-30 1977-03-29 Coulter Electronics, Inc. Aperture module for use in particle testing apparatus
DE2521236C3 (de) 1975-05-10 1978-12-14 Hildegard Dr. 4400 Muenster Goehde Geb. Kuhl Einrichtung zum Zählen und Messen von in einer Flüssigkeit suspendierten Teilchen
US3960449A (en) 1975-06-05 1976-06-01 The Board Of Trustees Of Leland Stanford Junior University Measurement of angular dependence of scattered light in a flowing stream
US4058732A (en) 1975-06-30 1977-11-15 Analytical Radiation Corporation Method and apparatus for improved analytical fluorescent spectroscopy
US4007087A (en) 1975-10-17 1977-02-08 Gametrics Limited Sperm fractionation and storage
AU2154077A (en) 1976-01-27 1978-07-27 Univ Edinburgh Control of sex ratio in mammalian offspring
US4302166A (en) 1976-04-22 1981-11-24 Coulter Electronics, Inc. Droplet forming apparatus for use in producing uniform particles
US4162282A (en) 1976-04-22 1979-07-24 Coulter Electronics, Inc. Method for producing uniform particles
JPS5319891A (en) 1976-06-10 1978-02-23 Coulter Electronics Method and apparatus for folling drop formation and separation
GB1583150A (en) 1976-08-02 1981-01-21 Milk Marketing Board Apparatus for collecting eggs
US4110604A (en) 1976-11-04 1978-08-29 Becton, Dickinson And Company Particle density measuring system
DE2709399C3 (de) 1977-03-04 1980-07-24 Goehde, Wolfgang, Dr., 4400 Muenster Einrichtung zum Messen von Zelleigenschaften
DE2716095A1 (de) 1977-04-12 1978-10-19 Zoeld Tibor Dr Phys Gasgesteuertes verfahren zum sortieren von in einem elektrolyten suspendierten teilchen und vorrichtung zur durchfuehrung des verfahrens
US4448767A (en) 1977-10-11 1984-05-15 Sumar Corporation Preparation of monospecific male-specific antibody and the use thereof for increasing the percentage of mammalian offspring of either sex
US4191749A (en) 1977-10-11 1980-03-04 Bryant Bernard J Method and material for increasing the percentage of mammalian offspring of either sex
US4189236A (en) 1978-03-20 1980-02-19 Coulter Electronics, Inc. Ellipsoid-conic radiation collector and method
US4179218A (en) 1978-05-15 1979-12-18 The Boeing Company Particle size analyzer
DE2832091A1 (de) 1978-07-21 1980-01-31 Eidenschink Henning Optisches verfahren zur bestimmung der teilchengroesse kolloidaler loesungen und messgeraet zur durchfuehrung des verfahrens
US4225405A (en) 1978-08-16 1980-09-30 Lawson Rommom L Process for separation and collection of viable female and male spermatozoa
US4276139A (en) 1978-08-16 1981-06-30 Lawson Rommon L Process for magnetic separation and collection of viable female and male spermatozoa
US4230558A (en) 1978-10-02 1980-10-28 Coulter Electronics, Inc. Single drop separator
US4341471A (en) 1979-01-02 1982-07-27 Coulter Electronics, Inc. Apparatus and method for measuring the distribution of radiant energy produced in particle investigating systems
US4267268A (en) 1979-03-12 1981-05-12 Nelson Jr Robert A Spermatozoa extenders
US4274408A (en) 1979-03-26 1981-06-23 Beatrice Nimrod Method for guide-wire placement and novel syringe therefor
US4200802A (en) 1979-03-28 1980-04-29 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Parabolic cell analyzer
US4408877A (en) 1979-04-10 1983-10-11 Ernst Leitz Wetzlar Gmbh Device for hydrodynamic focussing of a particle-suspension in a liquid flow cytophotometer
NO144002C (no) 1979-04-10 1981-05-27 Norsk Hydro S Inst For Kreftfo Anordning for anvendelse ved vaeskestroemsfotometri
US4255021A (en) 1979-04-20 1981-03-10 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Optical device with conical input and output prism faces
US4263508A (en) 1979-04-20 1981-04-21 Research Corporation Pulse edge measurement for determining particle dimensional characteristics
US4318480A (en) 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Method and apparatus for positioning the point of droplet formation in the jetting fluid of an electrostatic sorting device
US4325483A (en) 1979-08-20 1982-04-20 Ortho Diagnostics, Inc. Method for detecting and controlling flow rates of the droplet forming stream of an electrostatic particle sorting apparatus
US4318481A (en) 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Method for automatically setting the correct phase of the charge pulses in an electrostatic flow sorter
US4318482A (en) 1979-08-20 1982-03-09 Ortho Diagnostics, Inc. Method for measuring the velocity of a perturbed jetting fluid in an electrostatic particle sorting system
US4317520A (en) 1979-08-20 1982-03-02 Ortho Diagnostics, Inc. Servo system to control the spatial position of droplet formation of a fluid jet in a cell sorting apparatus
DE2943116C2 (de) 1979-10-25 1986-06-19 Gesellschaft für Strahlen- und Umweltforschung mbH, 8000 München Einrichtung zur durchflußcytometrischen Reaktions- und/oder Diffusionsmessung
US4284355A (en) 1979-10-29 1981-08-18 Ortho Diagnostics, Inc. Automated method for cell volume determination
US4400764A (en) 1980-02-05 1983-08-23 The Boeing Company Low backscatter illumination system
US4367043A (en) 1980-05-05 1983-01-04 Leland Stanford Junior University Method and means for delivering liquid samples to a sample scanning device
US4362246A (en) 1980-07-14 1982-12-07 Adair Edwin Lloyd Method of treating collected mammal semen and separating sperm into X Y components
US4348107A (en) 1980-07-18 1982-09-07 Coulter Electronics, Inc. Orifice inside optical element
EP0046345A3 (en) 1980-08-15 1982-03-03 Ortho Diagnostic Systems Inc. Controlled hydrodynamic flow in flow cytometry systems
US4350410A (en) 1980-10-08 1982-09-21 The United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Administration Multiprism collimator
US4487320A (en) 1980-11-03 1984-12-11 Coulter Corporation Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point in a droplet generation system
US4691829A (en) 1980-11-03 1987-09-08 Coulter Corporation Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point in a droplet generation system
US4395676A (en) 1980-11-24 1983-07-26 Coulter Electronics, Inc. Focused aperture module
US4361400A (en) 1980-11-26 1982-11-30 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Fluidic assembly for an ultra-high-speed chromosome flow sorter
US4680258A (en) 1981-03-24 1987-07-14 Sloan-Kettering Institute For Cancer Research Process for sex determination in man by use of monoclonal antibodies to the H-Y antigen
US4673288A (en) 1981-05-15 1987-06-16 Ratcom, Inc. Flow cytometry
US4818103A (en) 1981-05-15 1989-04-04 Ratcom Flow cytometry
DE3266669D1 (en) 1981-06-24 1985-11-07 Becton Dickinson Co Analyzer for simultaneously determining volume and light emission characteristics of particles
FR2510393A1 (fr) 1981-07-31 1983-02-04 Bertrand Cassou Appareil de transfert d'elements de reproduction animale, tels que des embryons
US4339434A (en) 1981-08-17 1982-07-13 Gametrics Limited Method of increasing the incidence of female offspring
US4395397A (en) 1981-09-17 1983-07-26 Sidney Farber Cancer Institute, Inc. Apparatus and method for killing unwanted cells
US4422761A (en) 1981-09-28 1983-12-27 Frommer Joseph C Photo-electric particle sensing system
US4515274A (en) 1981-12-02 1985-05-07 Coulter Corporation Particle analyzing and sorting apparatus
SU1056008A1 (ru) 1982-01-25 1983-11-23 Предприятие П/Я Р-6681 Проточный цитофлуориметр
JPS59500340A (ja) 1982-03-08 1984-03-01 モトロ−ラ・インコ−ポレ−テツド 集積回路のリ−ドフレ−ム
US4511661A (en) 1982-03-19 1985-04-16 University Patents, Inc. ATCC HB8116 And its monoclonal anti-H-Y antibody, Hyclonalan
US4498766A (en) 1982-03-25 1985-02-12 Becton, Dickinson And Company Light beam focal spot elongation in flow cytometry devices
DE3315194A1 (de) 1982-04-29 1983-11-03 International Remote Imaging Systems Inc., 91311 Chatsworth, Calif. Verfahren zum trennen von in einer fluidprobe stroemenden teilchen
DE3315195A1 (de) 1982-04-29 1983-11-03 International Remote Imaging Systems Inc., 91311 Chatsworth, Calif. Verfahren zum ausrichten von teilchen in einer fluidprobe
US4629687A (en) 1982-07-29 1986-12-16 Board Of Trustees Of Michigan State University Positive selection sorting of cells
GB2125181B (en) 1982-08-11 1986-01-29 Coulter Electronics Flow cells for particle study
US4559309A (en) 1982-09-01 1985-12-17 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Flow cytometry-fluorescence measurements for characterizing sperm
WO1984001265A1 (en) 1982-10-05 1984-04-12 Genetic Engineering Inc Method of treating collected mammal semen and separating sperm into x and y components
US4501366A (en) 1982-12-14 1985-02-26 Adolph Coors Company Photomultiplier tube assembly
DE3372137D1 (en) 1982-12-21 1987-07-23 Crosfield Electronics Ltd Light beam-splitter
US4492436A (en) 1983-01-03 1985-01-08 At&T Bell Laboratories Polarization independent beam splitter
JPS59143146A (ja) 1983-02-07 1984-08-16 Nippon Kogaku Kk <Nikon> ミラ−集光型照明光学系
CA1206559A (en) 1983-03-04 1986-06-24 Robert E. Auer Method of and apparatus for detecting change in the breakoff point of a droplet generation system
IT1197570B (it) 1983-02-11 1988-12-06 Serono Ist Farm Miscele di fsh e lh da ipofisi porcine in rapporto definito
CH651930A5 (en) 1983-03-24 1985-10-15 Coulter Corp Apparatus for analysis and sorting of particles
JPS59174742A (ja) 1983-03-25 1984-10-03 Agency Of Ind Science & Technol 微小粒子を区分又は選別する方法及びその装置
GB2145112B (en) 1983-04-27 1987-02-18 Milk Marketing Board Sorting living spermatozoa
US4523809A (en) 1983-08-04 1985-06-18 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Air Force Method and apparatus for generating a structured light beam array
NZ207393A (en) 1983-08-05 1987-03-31 Neal Lloyd First Staining dna in living cells
US4538733A (en) 1983-10-14 1985-09-03 Becton, Dickinson And Company Particle sorter with neutralized collection wells and method of using same
US4780406A (en) 1983-10-18 1988-10-25 The Regents Of The University Of California Flow cytometric measurement of total DNA and incorporated halodeoxyuridine
US4585736A (en) 1983-10-18 1986-04-29 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Flow cytometric measurement of total DNA and incorporated halodeoxyuridine
US4735504A (en) 1983-10-31 1988-04-05 Technicon Instruments Corporation Method and apparatus for determining the volume & index of refraction of particles
EP0148497B1 (de) 1983-12-24 1990-10-31 Inotech Ag Vorrichtung zum Führen und Sammeln von Licht in der Fotometrie od. dgl.
US4573796A (en) 1984-01-06 1986-03-04 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Apparatus for eliminating background interference in fluorescence measurements
US4631483A (en) 1984-02-01 1986-12-23 Coulter Electronics, Inc. Particle analyzing apparatus and method of moving particles in suspension through such apparatus
US4714680B1 (en) 1984-02-06 1995-06-27 Univ Johns Hopkins Human stem cells
US4965204A (en) 1984-02-06 1990-10-23 The Johns Hopkins University Human stem cells and monoclonal antibodies
WO1985004014A1 (en) 1984-02-29 1985-09-12 Research Corporation Flow cytometers
US4545677A (en) 1984-03-05 1985-10-08 Becton, Dickinson And Company Prismatic beam expander for light beam shaping in a flow cytometry apparatus
US4600302A (en) 1984-03-26 1986-07-15 Becton, Dickinson And Company Flow cytometry apparatus with uniform incoherent light excitation
DE3412620A1 (de) 1984-04-04 1985-10-17 Basf Ag, 6700 Ludwigshafen Laseroptische anordnung zur messung des dispergiergrades in stroemenden systemen
US4609286A (en) 1984-04-16 1986-09-02 Becton, Dickinson And Company Dispersion prism for separation of wavelengths of spectrally rich light in a flow cytometry apparatus
US4605558A (en) 1984-04-20 1986-08-12 Wallace Shrimpton Process for cell separation
US4660971A (en) 1984-05-03 1987-04-28 Becton, Dickinson And Company Optical features of flow cytometry apparatus
FR2563726B1 (fr) 1984-05-04 1986-10-10 Robert Cassou Appareil d'insemination artificielle, notamment des carnivores
FR2566543B1 (fr) 1984-06-20 1988-02-26 Commissariat Energie Atomique Dispositif optique a rendement de collection eleve et cytofluorimetre en faisant application
DE3580418D1 (de) 1984-07-31 1990-12-13 Hitachi Ltd Elektrophoretisches trennverfahren mit freier stroemung und apparat dafuer.
US4661913A (en) 1984-09-11 1987-04-28 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method for the detection and classification of articles using flow cytometry techniques
DE3574617D1 (de) 1984-09-11 1990-01-11 Partec Ag Verfahren und vorrichtung zur sortierung von mikroskopischen partikeln.
US4598408A (en) 1984-10-22 1986-07-01 Trw Inc. High extraction efficiency cylindrical ring resonator
FR2574656B1 (fr) 1984-12-13 1988-08-05 Cassou Robert Sonde gynecologique notamment pour l'injection de semence ou d'embryons dans la cavite des animaux, tels que les juments
FR2575063B1 (fr) 1984-12-21 1988-07-01 Cassou Robert Sonde gynecologique pour insemination artificielle, notamment pour porcins
SU1260778A1 (ru) 1985-01-31 1986-09-30 Центральный научно-исследовательский рентгено-радиологический институт Устройство дл флуоресцентного анализа отдельных микрочастиц в потоке
US4702598A (en) 1985-02-25 1987-10-27 Research Corporation Flow cytometer
US4683202A (en) 1985-03-28 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying nucleic acid sequences
US4683195A (en) 1986-01-30 1987-07-28 Cetus Corporation Process for amplifying, detecting, and/or-cloning nucleic acid sequences
CA1250808A (en) 1985-04-29 1989-03-07 David W. Dresser Semen sexing
US4662742A (en) 1985-05-10 1987-05-05 Becton, Dickinson And Company Scatter/fluorescene beam splitter in a flow cytometry apparatus
US4877965A (en) 1985-07-01 1989-10-31 Diatron Corporation Fluorometer
USRE34782E (en) 1985-07-01 1994-11-08 Diatron Corporation Fluorometer
US4744090A (en) 1985-07-08 1988-05-10 Trw Inc. High-extraction efficiency annular resonator
NO156916C (no) 1985-07-10 1987-12-16 Harald B Steen Stroemningskammer for vaeskestroemsfotometer.
NO156917C (no) 1985-07-16 1987-12-16 Harald B Steen Anordning for maaling av biologiske cellers lysspredning i vaeskestroemsfotometere.
US4989977A (en) 1985-07-29 1991-02-05 Becton, Dickinson And Company Flow cytometry apparatus with improved light beam adjustment
US4794086A (en) 1985-11-25 1988-12-27 Liquid Air Corporation Method for measurement of impurities in liquids
US4770992A (en) 1985-11-27 1988-09-13 Den Engh Gerrit J Van Detection of specific DNA sequences by flow cytometry
US4999283A (en) * 1986-01-10 1991-03-12 University Of Kentucky Research Foundation Method for x and y spermatozoa separation
US5447841A (en) 1986-01-16 1995-09-05 The Regents Of The Univ. Of California Methods for chromosome-specific staining
US5756696A (en) 1986-01-16 1998-05-26 Regents Of The University Of California Compositions for chromosome-specific staining
US4710635A (en) 1986-04-14 1987-12-01 Becton, Dickinson And Company Dual laser excitation from single laser source
NL8601000A (nl) 1986-04-21 1987-11-16 Jan Greve T H Twente Afdeling Het gebruik van gepolariseerd licht in stromingscytometrie.
US5336217A (en) 1986-04-24 1994-08-09 Institut National De La Sante Et De La Recherche Medicale (Insepm) Process for treatment by irradiating an area of a body, and treatment apparatus usable in dermatology for the treatment of cutaneous angio dysplasias
US4790653A (en) 1986-05-22 1988-12-13 Becton Dickinson And Company Housing for a flow cytometry apparatus with particle unclogging feature
JPS62274238A (ja) 1986-05-22 1987-11-28 ベクトン・デイツキンソン・アンド・カンパニ− フロ−サイトメトリ−装置に用いる光学的結合用ゲル
US4786165A (en) 1986-07-10 1988-11-22 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Flow cytometry and apparatus therefor
US4867908A (en) 1986-08-29 1989-09-19 Becton, Dickinson And Company Method and materials for calibrating flow cytometers and other analysis instruments
US4704891A (en) 1986-08-29 1987-11-10 Becton, Dickinson And Company Method and materials for calibrating flow cytometers and other analysis instruments
FR2609885B1 (fr) 1987-01-22 1989-04-14 Cassou Robert Instrument pour l'insemination artificielle, le transfert d'embryons ou le prelevement de liquides folliculaires chez les mammiferes
US4780451B1 (en) 1987-01-23 1995-04-04 Asua International Inc Composition and method for producing superovulation in cattle
US5162306A (en) 1987-01-23 1992-11-10 Donaldson Lloyd E Composition and method for producing superovulation in mammals
DE3786657D1 (de) 1987-02-17 1993-08-26 Ratcom Inc Durchflusszytometrie.
US4764013A (en) 1987-03-23 1988-08-16 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Interferometric apparatus and method for detection and characterization of particles using light scattered therefrom
US4765737A (en) 1987-03-30 1988-08-23 Cornell Research Foundation Cell size measurements using light in flow cytometry and cell sorting
US5346990A (en) 1987-04-08 1994-09-13 Cytogam, Inc. Sex-associated membrane proteins and methods for increasing the probability that offspring will be of a desired sex
US5021244A (en) * 1988-12-06 1991-06-04 Cytogam, Inc. Sex-associated membrane antibodies and their use for increasing the probability that offspring will be of a desired sex
DE3851458T2 (de) * 1987-04-08 1995-02-09 Hitachi Ltd Vorrichtung mit einer scheideförmigen Durchflusszelle.
JPS63262565A (ja) * 1987-04-20 1988-10-28 Hitachi Ltd フロ−セル
ATE110467T1 (de) 1987-04-27 1994-09-15 Preikschat F K Vorrichtung und verfahren zur untersuchung von teilchen.
EP0289677A3 (en) 1987-04-27 1989-05-10 Fritz K. Preikschat Apparatus and method for particle analysis
FR2614626B1 (fr) * 1987-04-30 1989-07-21 Ranoux Claude Conteneur pour fecondation des ovocytes et replacement des embryons chez l'homme et l'animal
JP2642632B2 (ja) 1987-07-03 1997-08-20 株式会社日立製作所 微粒子計測装置および微粒子計測方法
GB8716285D0 (en) 1987-07-10 1987-08-19 Medical Res Council Light collecting device
US4979093A (en) 1987-07-16 1990-12-18 Cavro Scientific Instruments XYZ positioner
US4987539A (en) 1987-08-05 1991-01-22 Stanford University Apparatus and method for multidimensional characterization of objects in real time
US4796788A (en) 1987-08-26 1989-01-10 Liqui-Box Corporation Bag-in-box packaging and dispensing of substances which will not readily flow by gravity
US4758729A (en) 1987-08-28 1988-07-19 Spectra-Physics, Inc. Apparatus and method for measuring the included angle of a reflective cone
DE3832901A1 (de) 1987-10-02 1989-04-20 Hitachi Ltd Teilchenmessvorrichtung
US4793705A (en) 1987-10-07 1988-12-27 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Single molecule tracking
US4831385A (en) 1987-10-14 1989-05-16 Burlington Industries, Inc. Vacuum tray fluid-jet start-up system
US4980277A (en) 1987-10-16 1990-12-25 Cultor Ltd. Cryoprotectant solution and method
US5712807A (en) 1987-10-21 1998-01-27 Bangham; James Andrew Pulse analyzing method and apparatus
US5789155A (en) 1987-10-30 1998-08-04 California Institute Of Technology Process for identifying nucleic acids and triple helices formed thereby
GB8726305D0 (en) 1987-11-10 1987-12-16 Secr Defence Portable particle analysers
AU2620488A (en) 1987-11-10 1989-06-01 Secretary Of State For Defence In Her Britannic Majesty's Government Of The United Kingdom Of Great Britain And Northern Ireland, The Particle monitoring system
US4845025A (en) 1987-11-10 1989-07-04 Coulter Corporation Biological sample mixing apparatus and method
GB8726304D0 (en) 1987-11-10 1987-12-16 Secr Defence Particle asymmetry analyser
US5040890A (en) 1987-11-25 1991-08-20 Becton, Dickinson And Company Sheathed particle flow controlled by differential pressure
US4887721A (en) 1987-11-30 1989-12-19 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Laser particle sorter
US4988619A (en) 1987-11-30 1991-01-29 United States Department Of Energy Flow cytometry apparatus
US4936465A (en) 1987-12-07 1990-06-26 Zoeld Tibor Method and apparatus for fast, reliable, and environmentally safe dispensing of fluids, gases and individual particles of a suspension through pressure control at well defined parts of a closed flow-through system
US5219729A (en) 1988-02-25 1993-06-15 Serono Laboratories, Inc. Fertility assay
US5622820A (en) * 1988-03-10 1997-04-22 City Of Hope Method for amplification and detection of RNA and DNA sequences
US4836038A (en) 1988-03-18 1989-06-06 Aim Instruments Ltd. Automated sampler-injector apparatus and method for sampling a quantity of sample and testing portions of said quantity
US5057413A (en) 1988-06-13 1991-10-15 Becton, Dickinson And Company Method for discriminating between intact and damaged cells in a sample
US5070080A (en) 1988-08-10 1991-12-03 Fahim Mostafa S Method of inhibiting generation, maturation, motility and viability of sperm with minerals in bioavailable form
JPH0718785B2 (ja) * 1988-09-19 1995-03-06 株式会社日立製作所 フローセル装置
JP2635125B2 (ja) 1988-09-30 1997-07-30 東亜医用電子株式会社 核の分葉指数を求めるための粒子分析装置及び方法
JP2635126B2 (ja) 1988-09-30 1997-07-30 東亜医用電子株式会社 核の分葉指数を求めるための粒子分析装置及び方法
JPH02168160A (ja) 1988-12-22 1990-06-28 Omron Tateisi Electron Co 細胞選別装置
US5726009A (en) 1989-03-20 1998-03-10 Anticancer, Inc. Native-state method and system for determining viability and proliferative capacity of tissues in vitro
JPH02289808A (ja) 1989-04-28 1990-11-29 Olympus Optical Co Ltd 照明光学系
US4981580A (en) 1989-05-01 1991-01-01 Coulter Corporation Coincidence arbitration in a flow cytomery sorting system
DE69028526T2 (de) 1989-05-10 1997-02-06 Us Agriculture Verfahren zur vorwahl des geschlechts der nachkommenschaft
JP2992298B2 (ja) 1989-05-12 1999-12-20 サイトガム,インコーポレイテッド 性関連膜タンパク質および子が所望の性を有する確率を増大させるための方法
US4942305A (en) 1989-05-12 1990-07-17 Pacific Scientific Company Integrating sphere aerosol particle detector
FR2647668A1 (fr) 1989-06-06 1990-12-07 Medizin Labortechnik Veb K Pipette de transfert pour embryons
US5055393A (en) 1989-06-13 1991-10-08 Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. Prenatal sex determination of bovine cells using male-specific oligonucleotides
US4954715A (en) 1989-06-26 1990-09-04 Zoeld Tibor Method and apparatus for an optimized multiparameter flow-through particle and cell analyzer
JPH0353164A (ja) * 1989-07-20 1991-03-07 Canon Inc サンプル供給装置及びこれを用いたサンプル測定装置
US5098657A (en) * 1989-08-07 1992-03-24 Tsi Incorporated Apparatus for measuring impurity concentrations in a liquid
US5030002A (en) 1989-08-11 1991-07-09 Becton, Dickinson And Company Method and apparatus for sorting particles with a moving catcher tube
US5005981A (en) * 1989-09-08 1991-04-09 Becton, Dickinson And Company Apparatus for method for causing vortices in a test tube
US5215376A (en) 1989-09-08 1993-06-01 Becton, Dickinson And Company Method for causing vortices in a test tube
EP0418026B1 (en) 1989-09-13 1994-11-30 Kabushiki Kaisha Tiyoda Seisakusho Apparatus for pretreating cells for flow cytometry
JP2808321B2 (ja) * 1989-09-19 1998-10-08 東亜医用電子株式会社 細胞分析方法及び装置
US5072382A (en) 1989-10-02 1991-12-10 Kamentsky Louis A Methods and apparatus for measuring multiple optical properties of biological specimens
US5275787A (en) 1989-10-04 1994-01-04 Canon Kabushiki Kaisha Apparatus for separating or measuring particles to be examined in a sample fluid
DE69025256T2 (de) 1989-10-11 1996-06-27 Canon Kk Gerät und Verfahren zur Trennung von Teilchen aus flüssigkeitssuspendierten Teilchen in Zusammenhang mit deren Eigenschaften
JPH03140840A (ja) 1989-10-26 1991-06-14 Hitachi Ltd 流動細胞分析装置
FR2653885B1 (fr) 1989-10-27 1994-01-14 Abx Appareil pour le comptage et la determination d'au moins une sous-population leucocytaire.
US5034613A (en) 1989-11-14 1991-07-23 Cornell Research Foundation, Inc. Two-photon laser microscopy
US5101978A (en) * 1989-11-27 1992-04-07 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Fluidic sorting device for two or more materials suspended in a fluid
AU647741B2 (en) 1989-12-01 1994-03-31 Regents Of The University Of California, The Methods and compositions for chromosome-specific staining
US5274240A (en) 1990-01-12 1993-12-28 The Regents Of The University Of California Capillary array confocal fluorescence scanner and method
DE69118429T2 (de) 1990-01-26 1996-09-12 Canon Kk Verfahren zur Messung einer Spezies unter Verwendung von Fluoreszenzlicht
JP3049254B2 (ja) 1990-02-08 2000-06-05 シスメックス株式会社 2種類の光源を備えた光学式粒子分析装置
IL93634A0 (en) 1990-03-05 1990-12-23 Galai Lab Ltd Particle size analyzer
US5153117A (en) 1990-03-27 1992-10-06 Genetype A.G. Fetal cell recovery method
US5492534A (en) 1990-04-02 1996-02-20 Pharmetrix Corporation Controlled release portable pump
US5150313A (en) 1990-04-12 1992-09-22 Regents Of The University Of California Parallel pulse processing and data acquisition for high speed, low error flow cytometry
US5076472A (en) 1990-06-13 1991-12-31 Becton, Dickinson And Company Cleaning cycle for flow cytometers
US5087295A (en) 1990-06-13 1992-02-11 Becton Dickinson And Company Cleaning cycle for flow cytometers
US5160974A (en) 1990-06-25 1992-11-03 Flow Science, Inc. Closed sample cell for use in flow cytometry
US5559032A (en) 1990-06-29 1996-09-24 Pomeroy; Patrick C. Method and apparatus for post-transfer assaying of material on solid support
US5366888A (en) 1990-07-09 1994-11-22 Amrad Corporation Limited Enhanced maintenance of pregnancy using leukaemia inhibitory factor in embryo culturing
JP2939647B2 (ja) 1990-07-24 1999-08-25 シスメックス株式会社 フローイメージングサイトメータにおける自動焦点調整方法
IE76732B1 (en) 1990-08-07 1997-11-05 Becton Dickinson Co One step test for absolute counts
US5259593A (en) 1990-08-30 1993-11-09 University Of Southern California Apparatus for droplet stream manufacturing
JPH04115136A (ja) 1990-09-05 1992-04-16 Hitachi Ltd 粒子計測装置
US5132548A (en) 1990-09-14 1992-07-21 High Yield Technology High sensitivity, large detection area particle sensor for vacuum applications
US5204884A (en) 1991-03-18 1993-04-20 University Of Rochester System for high-speed measurement and sorting of particles
US5273527A (en) 1992-05-12 1993-12-28 Ovamed Corporation Delivery catheter
US5663048A (en) 1990-10-04 1997-09-02 University Of Calgary Y-chromosome specific polynucleotide probes for prenatal sexing
US5840482A (en) * 1990-10-10 1998-11-24 The Regents Of The University Of California Y chromosome specific nucleic acid probe and method for determining the Y chromosome in situ
WO1992008120A1 (en) 1990-10-29 1992-05-14 Macquarie University Pulsed laser flow cytometry
WO1992008122A1 (en) 1990-10-31 1992-05-14 Biophos Medical Ab Fertility analyzer
US5116125A (en) 1990-10-31 1992-05-26 Biophos Medical Ab Fertility analyzer
JP2874746B2 (ja) 1990-11-22 1999-03-24 シスメックス株式会社 フローイメージングサイトメータにおけるフローセル機構
US5991028A (en) 1991-02-22 1999-11-23 Applied Spectral Imaging Ltd. Spectral bio-imaging methods for cell classification
JPH0734012B2 (ja) 1991-02-27 1995-04-12 東亜医用電子株式会社 フローイメージサイトメータ
JP3121849B2 (ja) 1991-02-27 2001-01-09 シスメックス株式会社 フローイメージサイトメータ
US5144224A (en) 1991-04-01 1992-09-01 Larsen Lawrence E Millimeter wave flow cytometer
US5199576A (en) 1991-04-05 1993-04-06 University Of Rochester System for flexibly sorting particles
EP0515211A3 (en) 1991-05-23 1993-04-07 Becton Dickinson And Company Apparatus and method for phase resolved fluorescence lifetimes of independent and varying amplitude pulses
DE9107792U1 (pl) 1991-06-25 1991-09-12 Labotect-Labor-Technik, Goettingen, Gmbh, 3406 Bovenden, De
FR2678506B1 (fr) 1991-07-01 2000-03-10 Claude Ranoux Procede de fecondation en cycle spontane.
US5548661A (en) 1991-07-12 1996-08-20 Price; Jeffrey H. Operator independent image cytometer
US5412466A (en) 1991-07-26 1995-05-02 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Apparatus for forming flattened sample flow for analyzing particles
US5488469A (en) 1991-08-30 1996-01-30 Omron Corporation Cell analyzing apparatus
DE69230902D1 (de) 1991-08-30 2000-05-18 Omron Tateisi Electronics Co Vorrichtung zur Zellenanalyse
US5548395A (en) 1991-09-20 1996-08-20 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Particle analyzer
US5578449A (en) 1991-10-03 1996-11-26 Hilding Ohlsson, S.A. Procedure for the sex determination of embryos in mammals especially applied to bovine embryos
US5919621A (en) 1991-10-24 1999-07-06 Brown; David B. Methods for diagnosing human male infertility
IT1253226B (it) 1991-10-24 1995-07-11 Piero Serra Catetere per l'introduzione o l'aspirazione di liquidi di diversa natura in animali particolarmente per trattamenti ginecologici in bovini, equini e simili
JP3212647B2 (ja) 1991-10-24 2001-09-25 シスメックス株式会社 イメージングフローサイトメータ
US5866344A (en) 1991-11-15 1999-02-02 Board Of Regents, The University Of Texas System Antibody selection methods using cell surface expressed libraries
US5370842A (en) 1991-11-29 1994-12-06 Canon Kabushiki Kaisha Sample measuring device and sample measuring system
JP2593021B2 (ja) 1991-12-13 1997-03-19 伊藤ハム株式会社 ウシ胚の性の識別方法
JP3130628B2 (ja) 1992-01-30 2001-01-31 シスメックス株式会社 粒子判定装置
US5400179A (en) 1992-02-18 1995-03-21 Asahi Kogaku Kogyo Kabushiki Kaisha Optical multilayer thin film and beam splitter
DE69321748T2 (de) 1992-02-20 1999-06-17 Canon Kk Verfahren und Messapparatur zur Handhabung von Teilchen
CA2130343C (en) 1992-02-21 2003-02-11 The Secretary Of State For Defence In Her Britannic Majesty's Government Of The United Kingdom Of Great Britain And Northern Ireland Analysis of particle characteristics
US5558998A (en) 1992-02-25 1996-09-24 The Regents Of The Univ. Of California DNA fragment sizing and sorting by laser-induced fluorescence
US6120735A (en) 1992-02-26 2000-09-19 The Ohio States University Fractional cell sorter
US5298967A (en) * 1992-06-02 1994-03-29 Pacific Scientific Company Measurement of concentrations of dissolved solvent
JP3145486B2 (ja) 1992-06-12 2001-03-12 シスメックス株式会社 イメージングフローサイトメータ
GB2284909B (en) 1992-07-13 1996-11-13 Pall Corp Automated system and method for processing biological fluid
JP3215175B2 (ja) 1992-08-10 2001-10-02 シスメックス株式会社 粒子分析装置
US5315122A (en) 1992-08-25 1994-05-24 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method for fluorescent lifetime measurement
US5466572A (en) 1992-09-03 1995-11-14 Systemix, Inc. High speed flow cytometric separation of viable cells
EP0662124B1 (en) 1992-09-03 2002-06-12 Systemix, Inc. High speed flow cytometric separation of viable mammalian cells
US5736410A (en) * 1992-09-14 1998-04-07 Sri International Up-converting reporters for biological and other assays using laser excitation techniques
US5275933A (en) 1992-09-25 1994-01-04 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Triple gradient process for recovering nucleated fetal cells from maternal blood
US5371585A (en) 1992-11-10 1994-12-06 Pacific Scientific Company Particle detecting instrument with sapphire detecting cell defining a rectangular flow path
US5359907A (en) 1992-11-12 1994-11-01 Horiba Instruments, Inc. Method and apparatus for dry particle analysis
US5395588A (en) 1992-12-14 1995-03-07 Becton Dickinson And Company Control of flow cytometer having vacuum fluidics
FR2699678A1 (fr) 1992-12-23 1994-06-24 Unceia Procédé cytométrique de séparation de spermatozoïdes X et Y en fonction de leur contenu en ADN.
ATE178439T1 (de) 1993-01-16 1999-04-15 James Andrew Bangham Signalverarbeitungssystem
JP2525713B2 (ja) 1993-01-19 1996-08-21 農林水産省畜産試験場長 低分子チオ―ル化合物を用いた牛胚の培養法および輸送法
US5467189A (en) 1993-01-22 1995-11-14 Venturedyne, Ltd. Improved particle sensor and method for assaying a particle
JP3052665B2 (ja) 1993-01-26 2000-06-19 株式会社日立製作所 フローセル装置
CA2113957A1 (en) 1993-01-29 1994-07-30 University Of Guelph Nucleotide sequences for bovine sex determination
IL108497A0 (en) 1993-02-01 1994-05-30 Seq Ltd Methods and apparatus for dna sequencing
US5453575A (en) 1993-02-01 1995-09-26 Endosonics Corporation Apparatus and method for detecting blood flow in intravascular ultrasonic imaging
US5367474A (en) 1993-02-08 1994-11-22 Coulter Corporation Flow cytometer
US5547849A (en) 1993-02-17 1996-08-20 Biometric Imaging, Inc. Apparatus and method for volumetric capillary cytometry
US5556764A (en) 1993-02-17 1996-09-17 Biometric Imaging, Inc. Method and apparatus for cell counting and cell classification
US5563059A (en) 1993-02-23 1996-10-08 Genentech, Inc. Use of human inhibin and human activin to increase the number of mature primate oocytes
WO1994020883A1 (en) 1993-03-01 1994-09-15 General Signal Corporation Variable annular illuminator for photolithographic projection imager
NO930980L (no) 1993-03-18 1994-09-19 Flowtech As Optisk konfigurasjon for væskeströmcytofotometer
US5658751A (en) 1993-04-13 1997-08-19 Molecular Probes, Inc. Substituted unsymmetrical cyanine dyes with selected permeability
US5494795A (en) * 1993-05-05 1996-02-27 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Specific oligonucleotide primers for detection of pathogenic campylobacter bacteria by polymerase chain reaction
US5439578A (en) 1993-06-03 1995-08-08 The Governors Of The University Of Alberta Multiple capillary biochemical analyzer
EP0627643B1 (en) 1993-06-03 1999-05-06 Hamamatsu Photonics K.K. Laser scanning optical system using axicon
AU6857094A (en) * 1993-06-04 1995-01-03 Kwahak International Co., Ltd. Artificial insemination and embryo transfer device
NO932088L (no) 1993-06-08 1995-01-05 Oddbjoern Gjelsnes Anordning for anvendelse ved væskeströmscytometri
US5483469A (en) 1993-08-02 1996-01-09 The Regents Of The University Of California Multiple sort flow cytometer
US5464581A (en) 1993-08-02 1995-11-07 The Regents Of The University Of California Flow cytometer
US6328071B1 (en) 1993-08-06 2001-12-11 Cary Austin Well pressure tank
US5596401A (en) * 1993-09-16 1997-01-21 Toa Medical Electronics Co., Ltd. Particle analyzing apparatus using a coherence lowering device
US5503994A (en) 1993-10-08 1996-04-02 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University System for sample detection with compensation for difference in sensitivity to detection of components moving at different velocities
US5480774A (en) 1993-10-14 1996-01-02 A/F Protein, Inc. Determination of genomic sex in salmonids
JP3290786B2 (ja) 1993-11-26 2002-06-10 シスメックス株式会社 粒子分析装置
GB9324938D0 (en) * 1993-12-04 1994-01-26 Atomic Energy Authority Uk Aerosol generator
FI96452C (fi) 1994-01-26 1996-06-25 Pekka Haenninen Menetelmä väriaineiden virittämiseksi
JP2683297B2 (ja) 1994-02-28 1997-11-26 スンキョン インダストリーズ カンパニー リミテッド ピリミジンアシクロヌクレオシド誘導体
US5475487A (en) 1994-04-20 1995-12-12 The Regents Of The University Of California Aqueous carrier waveguide in a flow cytometer
DE4414940C2 (de) 1994-04-28 1998-07-02 Pekka Haenninen Lumineszenz-Rastermikroskop mit zwei Photonen Anregung
US5595866A (en) 1994-05-27 1997-01-21 Methodist Hospital Of Indiana, Inc. Step-wise method to remove cryoprotectant from sperm
DE4419894A1 (de) 1994-06-07 1995-12-14 Gip Medizin Technik Gmbh Endoskopische Punktionsnadelvorrichtung
EP0687956B2 (de) 1994-06-17 2005-11-23 Carl Zeiss SMT AG Beleuchtungseinrichtung
US5891734A (en) 1994-08-01 1999-04-06 Abbott Laboratories Method for performing automated analysis
US5601234A (en) 1994-08-01 1997-02-11 Abbott Laboratories Fluid nozzle and method of introducing a fluid
JP3375203B2 (ja) 1994-08-08 2003-02-10 シスメックス株式会社 細胞分析装置
FR2723735B1 (fr) 1994-08-18 1996-10-31 Abx Sa Boitier a branchement automatique pour distribution de reactifs dans un appareil notamment un analyseur hematologique.
US5790692A (en) 1994-09-07 1998-08-04 Jeffrey H. Price Method and means of least squares designed filters for image segmentation in scanning cytometry
US20020186874A1 (en) 1994-09-07 2002-12-12 Jeffrey H. Price Method and means for image segmentation in fluorescence scanning cytometry
US5700692A (en) 1994-09-27 1997-12-23 Becton Dickinson And Company Flow sorter with video-regulated droplet spacing
IL115327A (en) 1994-10-07 2000-08-13 Bayer Ag Diaphragm pump
US5934885A (en) 1994-10-07 1999-08-10 Bayer Corporation Reagent pump assembly
JPH10507524A (ja) 1994-10-14 1998-07-21 ユニバーシティ オブ ワシントン 高速フローサイトメータ液滴形成システム
US5602349A (en) * 1994-10-14 1997-02-11 The University Of Washington Sample introduction system for a flow cytometer
US5643796A (en) 1994-10-14 1997-07-01 University Of Washington System for sensing droplet formation time delay in a flow cytometer
US6861265B1 (en) 1994-10-14 2005-03-01 University Of Washington Flow cytometer droplet formation system
US5602039A (en) 1994-10-14 1997-02-11 The University Of Washington Flow cytometer jet monitor system
US5495719A (en) 1994-11-14 1996-03-05 Gray, Jr.; Carl O. Method of preserving spermatozoa
JP3347495B2 (ja) 1994-11-14 2002-11-20 シスメックス株式会社 粒子分析装置
US5514537A (en) 1994-11-28 1996-05-07 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College Process and apparatus for sorting spermatozoa
DE69530072T2 (de) 1994-12-08 2004-03-04 Molecular Dynamics, Sunnyvale System zur fluoreszenzabbildung unter verwendung eines objektivs mit makroabtastung
US5632754A (en) 1994-12-23 1997-05-27 Devices For Vascular Intervention Universal catheter with interchangeable work element
EP0720012B1 (en) 1994-12-26 2004-09-08 Sysmex Corporation Flow cytometer
US5835262A (en) 1994-12-28 1998-11-10 Research Development Corporation Of Japan Multi-wavelength optical microscope
FI98765C (fi) * 1995-01-16 1997-08-11 Erkki Soini Virtaussytometrinen menetelmä ja laite
US5793485A (en) 1995-03-20 1998-08-11 Sandia Corporation Resonant-cavity apparatus for cytometry or particle analysis
US5608519A (en) 1995-03-20 1997-03-04 Gourley; Paul L. Laser apparatus and method for microscopic and spectroscopic analysis and processing of biological cells
US5620842A (en) 1995-03-29 1997-04-15 Becton Dickinson And Company Determination of the number of fluorescent molecules on calibration beads for flow cytometry
US5786560A (en) 1995-03-31 1998-07-28 Panasonic Technologies, Inc. 3-dimensional micromachining with femtosecond laser pulses
US5682038A (en) 1995-04-06 1997-10-28 Becton Dickinson And Company Fluorescent-particle analyzer with timing alignment for analog pulse subtraction of fluorescent pulses arising from different excitation locations
US5528045A (en) 1995-04-06 1996-06-18 Becton Dickinson And Company Particle analyzer with spatially split wavelength filter
US5641457A (en) 1995-04-25 1997-06-24 Systemix Sterile flow cytometer and sorter with mechanical isolation between flow chamber and sterile enclosure
US5687727A (en) 1995-05-01 1997-11-18 Danforth Biomedical Incorporated Catheter adaptor with slitting blade and improved manual control and method of use
WO1996035384A1 (en) 1995-05-09 1996-11-14 Curators Of The University Of Missouri A system for introducing a fluid into the uterus of an animal
FR2734637B1 (fr) 1995-05-24 1997-08-14 Abx Sa Dispositif d'inspection optique d'un fluide, notamment pour analyses hematologiques
US5798276A (en) 1995-06-07 1998-08-25 Molecular Probes, Inc. Reactive derivatives of sulforhodamine 101 with enhanced hydrolytic stability
US5650847A (en) 1995-06-14 1997-07-22 Erkki Soini Method and device for determination of parameters of individual microparticles
US6454945B1 (en) 1995-06-16 2002-09-24 University Of Washington Microfabricated devices and methods
US5716852A (en) 1996-03-29 1998-02-10 University Of Washington Microfabricated diffusion-based chemical sensor
US5589457A (en) 1995-07-03 1996-12-31 Ausa International, Inc. Process for the synchronization of ovulation
US6411835B1 (en) 1997-01-13 2002-06-25 Medispectra, Inc. Spectral volume microprobe arrays
US5840504A (en) 1995-08-11 1998-11-24 University Of Guelph Method for separating sex specific molecules and non-sex specific molecules
CA2231114A1 (en) 1995-09-06 1997-03-13 The Research Foundation Of State University Of New York Two-photon upconverting dyes and applications
DE19533092A1 (de) 1995-09-07 1997-03-13 Basf Ag Vorrichtung zur parallelisierten Zweiphotonen-Fluoreszenz-Korrelations-Spektroskopie (TPA-FCS) und deren Verwendung zum Wirkstoff-Screening
US6329158B1 (en) 1995-09-15 2001-12-11 Becton Dickinson And Company Use of dimly fluorescing nucleic acid dyes in the identification of nucleated cells
US6040139A (en) 1995-09-19 2000-03-21 Bova; G. Steven Laser cell purification system
US5726751A (en) 1995-09-27 1998-03-10 University Of Washington Silicon microchannel optical flow cytometer
US5780230A (en) 1995-10-06 1998-07-14 Coriell Institute For Medical Research Compositions and methods for human sperm activation and quantitative assessment of human sperm genome replication
US5736330A (en) 1995-10-11 1998-04-07 Luminex Corporation Method and compositions for flow cytometric determination of DNA sequences
US6117068A (en) 1995-10-19 2000-09-12 Elite Genetics, Inc Artificial insemination system
WO1997014785A2 (en) * 1995-10-19 1997-04-24 Advanced Reproduction Technologies, Inc. Methods and compositions to improve germ cell and embryo survival and function
DK0863700T3 (da) 1995-11-09 2003-06-30 Applied Research Systems Anvendelse af CYB-medium til transport og opbevaring af sperm
DE19549015C1 (de) 1995-12-28 1997-04-03 Siemens Ag Verfahren und Anordnung zur Überwachung eines abreißenden Flüssigkeitstrahls
JP3584108B2 (ja) 1996-01-08 2004-11-04 キヤノン株式会社 レンズ鏡筒
US6641708B1 (en) 1996-01-31 2003-11-04 Board Of Regents, The University Of Texas System Method and apparatus for fractionation using conventional dielectrophoresis and field flow fractionation
WO1997029354A1 (de) 1996-02-05 1997-08-14 Bayer Aktiengesellschaft Verfahren und vorrichtung zum sortieren und zur gewinnung von planar ausgebrachten biologischen objekten wie biologische zellen bzw. zellorganellen, histologischen schnitten, chromosomenteilchen etc. mit laserstrahlen
BR9600722A (pt) 1996-02-14 1997-12-30 Jorge Antonio Rodrigues Claro Bomba de infusão para contidos em bolsas plásticas flexíveis
WO1997030338A1 (en) 1996-02-16 1997-08-21 Inphocyte, Inc. System and method for rapid analysis of cells using spectral cytometry
JP3127111B2 (ja) 1996-02-22 2001-01-22 株式会社日立製作所 フロー式粒子画像解析方法および装置
US6090947A (en) 1996-02-26 2000-07-18 California Institute Of Technology Method for the synthesis of pyrrole and imidazole carboxamides on a solid support
US6143901A (en) 1996-07-31 2000-11-07 Genesoft, Inc. Complex formation between dsDNA and pyrrole imidazole polyamides
US5895922A (en) * 1996-03-19 1999-04-20 Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of National Defence Fluorescent biological particle detection system
US5701012A (en) 1996-03-19 1997-12-23 Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of National Defence Fluorescent biological particle detection system
US5747349A (en) 1996-03-20 1998-05-05 University Of Washington Fluorescent reporter beads for fluid analysis
JP3640461B2 (ja) 1996-04-03 2005-04-20 シスメックス株式会社 粒子分析装置
US5707808A (en) 1996-04-15 1998-01-13 The Regents Of The University Of California Optical selection and collection of DNA fragments
CA2253710A1 (en) 1996-04-25 1997-10-30 Spectrametrix Inc. Analyte assay using particulate labels
WO1997043620A1 (en) 1996-05-15 1997-11-20 International Remote Imaging Systems, Inc. Selectively emphasizing particles of interest from a fluid sample for analysis
JP2963393B2 (ja) * 1996-06-14 1999-10-18 浜松ホトニクス株式会社 光電子増倍管用電圧分割回路
US5846737A (en) 1996-07-26 1998-12-08 Molecular Probes, Inc. Conjugates of sulforhodamine fluorophores with enhanced fluorescence
US5909278A (en) 1996-07-29 1999-06-01 The Regents Of The University Of California Time-resolved fluorescence decay measurements for flowing particles
US6074827A (en) 1996-07-30 2000-06-13 Aclara Biosciences, Inc. Microfluidic method for nucleic acid purification and processing
US5719667A (en) 1996-07-30 1998-02-17 Bayer Corporation Apparatus for filtering a laser beam in an analytical instrument
US5844685A (en) 1996-07-30 1998-12-01 Bayer Corporation Reference laser beam sampling apparatus
US5872627A (en) 1996-07-30 1999-02-16 Bayer Corporation Method and apparatus for detecting scattered light in an analytical instrument
US6042249A (en) 1996-07-30 2000-03-28 Bayer Corporation Illuminator optical assembly for an analytical instrument and methods of alignment and manufacture
US5745308A (en) 1996-07-30 1998-04-28 Bayer Corporation Methods and apparatus for an optical illuminator assembly and its alignment
US5883378A (en) 1996-07-30 1999-03-16 Bayer Corporation Apparatus and methods for transmitting electrical signals indicative of optical interactions between a light beam and a flowing suspension of particles
EP0822401A3 (en) 1996-07-30 1999-05-06 Bayer Corporation Hydraulic system for a hematology analytical instrument
EP0822404B1 (en) 1996-07-30 2009-06-17 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Optical system for a hematology analytical instrument
US5998140A (en) 1996-07-31 1999-12-07 The Scripps Research Institute Complex formation between dsDNA and oligomer of cyclic heterocycles
US5804436A (en) 1996-08-02 1998-09-08 Axiom Biotechnologies, Inc. Apparatus and method for real-time measurement of cellular response
DE69731320T2 (de) 1996-08-07 2006-02-23 Cuno Inc., Meriden Abgabevorrichtung für additive
DE69709377T2 (de) 1996-09-04 2002-08-14 Scandinavian Micro Biodevices Mikrofliesssystem für die teilchenanalyse und trennung
US5873254A (en) * 1996-09-06 1999-02-23 Interface Multigrad Technology Device and methods for multigradient directional cooling and warming of biological samples
CA2265587C (en) 1996-09-06 2004-11-23 Medarex, Inc. Cyanidin compositions and therapeutic and diagnostic uses therefor
US6221654B1 (en) 1996-09-25 2001-04-24 California Institute Of Technology Method and apparatus for analysis and sorting of polynucleotides based on size
US5759767A (en) 1996-10-11 1998-06-02 Joseph R. Lakowicz Two-photon and multi-photon measurement of analytes in animal and human tissues and fluids
US6002471A (en) 1996-11-04 1999-12-14 California Institute Of Technology High resolution scanning raman microscope
US5799830A (en) 1996-11-08 1998-09-01 Carroll; David C. Pressure vessel access port
US5696157A (en) 1996-11-15 1997-12-09 Molecular Probes, Inc. Sulfonated derivatives of 7-aminocoumarin
CA2279574C (en) 1997-01-31 2007-07-24 The Horticulture & Food Research Institute Of New Zealand Ltd. Optical apparatus
US5874266A (en) 1997-03-27 1999-02-23 Palsson; Bernhard O. Targeted system for removing tumor cells from cell populations
US6534308B1 (en) 1997-03-27 2003-03-18 Oncosis, Llc Method and apparatus for selectively targeting specific cells within a mixed cell population
US6753161B2 (en) 1997-03-27 2004-06-22 Oncosis Llc Optoinjection methods
GB9707096D0 (en) 1997-04-08 1997-05-28 Smithkline Beecham Plc Novel device
JP2968231B2 (ja) 1997-04-11 1999-10-25 株式会社荏原製作所 空調システム
US6050935A (en) * 1997-05-09 2000-04-18 Biofertec Container assembly for intravaginal fertilization and culture and embryo transfer and method of intravaginal fertilization and culture employing such a container
US6133995A (en) 1997-05-09 2000-10-17 Sysmex Corporation Particle measuring apparatus
AU7831798A (en) 1997-06-09 1998-12-30 Guava Technologies, Inc. Method and apparatus for detecting microparticles in fluid samples
US6139800A (en) 1997-06-23 2000-10-31 Luminex Corporation Interlaced lasers for multiple fluorescence measurement
DE69834527T2 (de) 1997-07-01 2007-05-10 VLP Watertown Limited Partnership, Watertown Verfahren zur Geschlechtsbestimmung von Säuger-Nachkommenschaft
US6111398A (en) 1997-07-03 2000-08-29 Coulter International Corp. Method and apparatus for sensing and characterizing particles
BR9704313A (pt) 1997-07-08 1999-04-06 Alves Elias Walter Utilização de ig-y de ovo de galinha associado a anticorpos monoclonais contra antigenos sexo especifico na imunosexagem de espermatozóides de bovinos
US5899848A (en) 1997-07-14 1999-05-04 Haubrich; Mark A. Device and process for artificial insemination of animals
US5876942A (en) 1997-07-24 1999-03-02 National Science Council Of Republic Of China Process for sexing cow embryos
US5985216A (en) 1997-07-24 1999-11-16 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Agriculture Flow cytometry nozzle for high efficiency cell sorting
US5985538A (en) 1997-08-01 1999-11-16 Saint Barnabas Medical Center Cryopreservation and cell culture medium comprising less than 50 mM sodium ions and greater than 100 mM choline salt
US6003678A (en) 1997-08-21 1999-12-21 University Of Washington Particle separating apparatus and method
US5819948A (en) 1997-08-21 1998-10-13 Van Den Engh; Gerrit J. Particle separating apparatus and method
US5880474A (en) 1997-08-29 1999-03-09 Becton Dickinson And Company Multi-illumination-source flow particle analyzer with inter-location emissions crosstalk cancelation
EP1028622A1 (en) 1997-09-22 2000-08-23 University Of Guelph Reduction of sperm sensitivity to chilling
US6540895B1 (en) 1997-09-23 2003-04-01 California Institute Of Technology Microfabricated cell sorter for chemical and biological materials
US6322901B1 (en) 1997-11-13 2001-11-27 Massachusetts Institute Of Technology Highly luminescent color-selective nano-crystalline materials
AU754775B2 (en) 1997-11-19 2002-11-21 University Of Washington High throughput optical scanner
US6086574A (en) 1997-11-21 2000-07-11 Hyclone Laboratories, Inc. Fluid delivery systems with diptube connector
US5895764A (en) * 1997-11-24 1999-04-20 University Of New Mexico Controlled sheath flow injection cytometry
US6207392B1 (en) 1997-11-25 2001-03-27 The Regents Of The University Of California Semiconductor nanocrystal probes for biological applications and process for making and using such probes
US5990479A (en) 1997-11-25 1999-11-23 Regents Of The University Of California Organo Luminescent semiconductor nanocrystal probes for biological applications and process for making and using such probes
WO1999031488A1 (en) 1997-12-12 1999-06-24 Chemunex S.A. Digital flow cytometer
US6149867A (en) 1997-12-31 2000-11-21 Xy, Inc. Sheath fluids and collection systems for sex-specific cytometer sorting of sperm
US6071689A (en) 1997-12-31 2000-06-06 Xy, Inc. System for improving yield of sexed embryos in mammals
WO1999038883A1 (en) 1998-02-03 1999-08-05 Xy, Inc. Specific oligonucleotide primers for detection of bovine male chromosome presence by polymerase chain reaction and method
CN100357723C (zh) 1998-02-20 2007-12-26 Xy公司 用于分类流量细胞计数器的振动系统和流量细胞计数方法
US6746873B1 (en) 1998-02-20 2004-06-08 Xy, Inc. Vibratory system for a sorting flow cytometer
US6154276A (en) 1998-02-23 2000-11-28 The Regents Of The University Of California Waveguide detection of right-angle-scattered light in flow cytometry
US6211477B1 (en) 1998-02-26 2001-04-03 Becton Dickinson And Company Electrostatic deceleration system for flow cytometer
US6248590B1 (en) 1998-02-27 2001-06-19 Cytomation, Inc. Method and apparatus for flow cytometry
US6042025A (en) 1998-03-13 2000-03-28 Smith Et Al. Two hole dispenser with baffles
EP1064531B1 (en) 1998-03-16 2003-11-19 Partec Partikelzählgeräte GmbH Electronic apparatus for dispensing precise small quantities of fluid
JP3594794B2 (ja) 1998-03-24 2004-12-02 独立行政法人 科学技術振興機構 ナノ秒時間ゲート分光診断装置
US6642018B1 (en) 1998-03-27 2003-11-04 Oncosis Llc Method for inducing a response in one or more targeted cells
NZ506887A (en) 1998-03-30 2003-12-19 Bioshaf Ltd Flow cytometer analysis of cells and body fluids for fertility testing
US6175409B1 (en) 1999-04-02 2001-01-16 Symyx Technologies, Inc. Flow-injection analysis and variable-flow light-scattering methods and apparatus for characterizing polymers
JP3350442B2 (ja) 1998-04-09 2002-11-25 科学技術振興事業団 顕微鏡システム
JP3946444B2 (ja) 1998-05-14 2007-07-18 ルミネックス コーポレイション フローサイトメータのデッドタイムをゼロにする構成および方法
EP1046032A4 (en) 1998-05-18 2002-05-29 Univ Washington LIQUID ANALYSIS CARTRIDGE
ATE530891T1 (de) 1998-05-22 2011-11-15 California Inst Of Techn Miniaturisierter zellsortierer
US6079836A (en) 1998-07-20 2000-06-27 Coulter International Corp. Flow cytometer droplet break-off location adjustment mechanism
NZ509434A (en) 1998-07-30 2004-03-26 Univ Colorado State Res Found Equine system for non-surgical artificial insemination
US6729369B2 (en) 1998-07-31 2004-05-04 Chata Biosystems, Inc. Vessel for containing/transporting a fluent substance
US20040107150A1 (en) 1998-07-31 2004-06-03 Chata Biosystems, Inc. Of Colorado Apparatus and method with vessel for containing/transporting a fluent substance
DE29813921U1 (de) 1998-08-04 1998-10-08 Kisfeld Alfons Vorrichtung zur Besamung von Tieren, insbesondere Sauen
US6309815B1 (en) 1998-08-07 2001-10-30 University Of Kansas Medical Center Composition and method for preparation, storage and activation of large populations of immotile sperm
WO2000009113A1 (en) 1998-08-17 2000-02-24 Trout William E Use of zeranol to modulate reproductive cycles
US6400453B1 (en) 1998-08-21 2002-06-04 Union Biometrica, Inc. Instrument for selecting and depositing multicellular organisms and other large objects
US6326144B1 (en) 1998-09-18 2001-12-04 Massachusetts Institute Of Technology Biological applications of quantum dots
US6495333B1 (en) 1998-09-22 2002-12-17 Becton Dickinson And Company Flow cytometric, whole blood dendritic cell immune function assay
US6208411B1 (en) 1998-09-28 2001-03-27 Kla-Tencor Corporation Massively parallel inspection and imaging system
US6707555B1 (en) 1998-10-15 2004-03-16 Sysmex Corporation Optical information measuring apparatus
US6423505B1 (en) 1998-12-03 2002-07-23 Becton Dickinson And Company Methods and reagents for quantitation of HLA-DR and CD11b expression on peripheral blood cells
US7116407B2 (en) 1998-12-15 2006-10-03 Union Biometrica, Inc. System for axial pattern analysis of multicellular organisms
US6128133A (en) 1998-12-22 2000-10-03 Lucent Technologies Inc. Optical beamsplitter
EP1018644A2 (en) 1999-01-06 2000-07-12 Bayer Corporation Variable rate particle counter and method of use
US6256096B1 (en) 1999-01-11 2001-07-03 Softray Flow cytometry apparatus and method
US20010006416A1 (en) 1999-01-11 2001-07-05 Johnson Paul E. Ribbon flow cytometry apparatus and methods
US6150119A (en) 1999-01-19 2000-11-21 Caliper Technologies Corp. Optimized high-throughput analytical system
US6580504B1 (en) 1999-01-25 2003-06-17 Amnis Corporation Multipass cavity for illumination and excitation of moving objects
US6473176B2 (en) 1999-01-25 2002-10-29 Amnis Corporation Imaging and analyzing parameters of small moving objects such as cells
US6671044B2 (en) 1999-01-25 2003-12-30 Amnis Corporation Imaging and analyzing parameters of small moving objects such as cells in broad flat flow
US6119465A (en) 1999-02-10 2000-09-19 Mullens; Patrick L. Shipping container for storing materials at cryogenic temperatures
FR2789778B1 (fr) * 1999-02-12 2001-09-14 France Telecom Procede pour associer des references d'acheminement a des paquets de donnees au moyen d'une memoire trie, et routeur de paquets appliquant ce procede
US6323632B1 (en) 1999-08-13 2001-11-27 Coulter International Corp. Solid state RF oscillator-detector for flow cytometer
US6097485A (en) 1999-03-08 2000-08-01 Integrated Waveguides, Inc. Microchip optical transport technology for use in a personal flow cytometer
FR2791645B1 (fr) 1999-04-02 2001-06-15 Valois Sa Echantillon de produit fluide destine a la presse
US6193647B1 (en) 1999-04-08 2001-02-27 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Microfluidic embryo and/or oocyte handling device and method
US6793387B1 (en) 1999-05-08 2004-09-21 Chata Biosystems, Inc. Apparatus for automatic preparation of a mixture and method
FR2793495B1 (fr) 1999-05-14 2001-08-10 Imv Technologies Dilueur pour la cryoconservation de spermatozoides de bovins
FR2793708B1 (fr) 1999-05-21 2001-08-03 Valois Sa Dispositif de distribution de produit fluide
US6372506B1 (en) 1999-07-02 2002-04-16 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method for verifying drop delay in a flow cytometer
IT1307787B1 (it) 1999-07-26 2001-11-19 Univ Firenze Processo per incrementare la motilita' degli spermatozoi e spermatozoia motilita' superiore cosi' ottenuti.
DE19935766A1 (de) 1999-07-29 2001-02-01 Friedrich Schiller Uni Jena Bu Verfahren zur optischen Anregung von Fluorophor-markierter DNA und RNA
US6664550B2 (en) 1999-08-30 2003-12-16 Sandia National Laboratories Apparatus to collect, classify, concentrate, and characterize gas-borne particles
US6495366B1 (en) 1999-09-03 2002-12-17 Therakos, Inc. Uninterrupted flow pump apparatus and method
US6813017B1 (en) 1999-10-20 2004-11-02 Becton, Dickinson And Company Apparatus and method employing incoherent light emitting semiconductor devices as particle detection light sources in a flow cytometer
WO2001028700A1 (en) 1999-10-21 2001-04-26 Cytomation, Inc. Transiently dynamic flow cytometer analysis system
US6472153B1 (en) 1999-10-26 2002-10-29 Epoch Biosciences, Inc. Hybridization-triggered fluorescent detection of nucleic acids
US7208265B1 (en) * 1999-11-24 2007-04-24 Xy, Inc. Method of cryopreserving selected sperm cells
JP5087192B2 (ja) 1999-11-30 2012-11-28 インテレクソン コーポレイション 細胞群内の特定細胞に選択的に照準付けする方法及び装置
US6263745B1 (en) 1999-12-03 2001-07-24 Xy, Inc. Flow cytometer nozzle and flow cytometer sample handling methods
US6558911B1 (en) 1999-12-10 2003-05-06 Oregon Health Sciences University Sperm quality assay
US6726619B2 (en) 2000-01-03 2004-04-27 Iberica De Reproduccion Asistida, S.L. Artificial insemination device for pigs
IT1317724B1 (it) 2000-01-14 2003-07-15 Istituto Sperimentale Italiano Procedimento per la produzione di embrioni non umani di sessopredeterminato ad alto valore genetico.
US6465169B2 (en) 2000-01-14 2002-10-15 Artemis Pharmaceuticals Gmbh Method for cryoconservation of Zebrafish sperm
ATE216182T1 (de) 2000-01-14 2002-05-15 Artemis Pharmaceuticals Gmbh Verfahren zur kryokonservierung von zebrafisch- samen
EP1257664A4 (en) 2000-01-28 2006-04-05 Althea Technologies Inc METHOD FOR THE ANALYSIS OF GENE EXPRESSION
US6587203B2 (en) 2000-02-17 2003-07-01 Cornell Research Foundation, Inc. Sort stream stabilizer for flow cytometer
US6618143B2 (en) 2000-02-18 2003-09-09 Idexx Laboratories, Inc. High numerical aperture flow cytometer and method of using same
US6646742B1 (en) 2000-02-19 2003-11-11 Mwi, Inc. Optical device and method for multi-angle laser light scatter
GB2360360B (en) 2000-03-14 2002-03-20 Univ Bristol A method of sorting cells
JP3587755B2 (ja) 2000-03-14 2004-11-10 シスメックス株式会社 粒子測定装置およびその方法
US6482652B2 (en) 2000-03-23 2002-11-19 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Biological particle sorter
MXPA02009613A (es) 2000-03-30 2004-07-30 Univ Iowa State Res Found Marcadores geneticos para caracteristicas de carne mejoradas en animales.
AU2001250287B2 (en) 2000-04-11 2005-06-23 Chemometec A/S Method and apparatus for detecting fluorescence of a sample
EP1147774A1 (en) 2000-04-20 2001-10-24 Stichting Dienst Landbouwkundig Onderzoek Method for improving the quality of sperm for artificial insemination of animals
CA2408939C (en) 2000-05-09 2011-11-08 Xy, Inc. High purity x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations of spermatozoa
CA2409833A1 (en) 2000-05-19 2001-11-29 Cytomation, Inc. A rapid multi-material sample input system
US6590911B1 (en) 2000-06-02 2003-07-08 Coherent, Inc. Passively modelocked harmonic-generating laser
US6700130B2 (en) 2001-06-29 2004-03-02 Honeywell International Inc. Optical detection system for flow cytometry
US7351376B1 (en) 2000-06-05 2008-04-01 California Institute Of Technology Integrated active flux microfluidic devices and methods
US6503698B1 (en) 2000-06-16 2003-01-07 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Cryopreservation of swine embryos
CN1633259A (zh) 2000-06-12 2005-06-29 Xy公司 利用分离的带x-染色体和带y-染色体的精子群的综合兽群管理系统
DE10031028B4 (de) 2000-06-26 2008-09-04 Gnothis Holding Sa Verfahren zur Selektion von Partikeln
GB0016920D0 (en) 2000-07-10 2000-08-30 Univ Cambridge Tech Decondensation of DNA
US20040005582A1 (en) * 2000-08-10 2004-01-08 Nanobiodynamics, Incorporated Biospecific desorption microflow systems and methods for studying biospecific interactions and their modulators
MXPA03001069A (es) 2000-08-10 2004-04-02 Gtc Biotherapeutics Inc Crio-preservacion de esperma.
FR2813283B1 (fr) 2000-08-25 2003-02-14 Valois Sa Distributeur a pompe integree
EP1190684A1 (en) 2000-09-05 2002-03-27 Universiteit Gent Device and method for artificial insemination of bovines and other animals
US20020028434A1 (en) 2000-09-06 2002-03-07 Guava Technologies, Inc. Particle or cell analyzer and method
CN1483081A (zh) 2000-09-08 2004-03-17 衣阿华州立大学研究基金公司 新的prkag3等位基因及其作为生殖和肉质性状的遗传标记的应用
AU2001290879A1 (en) 2000-09-15 2002-03-26 California Institute Of Technology Microfabricated crossflow devices and methods
GB0023041D0 (en) 2000-09-20 2000-11-01 Univ Manchester Identification apparatus
CN1325909C (zh) 2000-09-27 2007-07-11 清华大学 用于微粒操纵与微粒导向的装置及其使用方法
US7208120B2 (en) 2000-09-27 2007-04-24 The Trustees Of Boston University Cellular diagnostic arrays, methods of using and processing for producing same
BR0005045A (pt) 2000-09-28 2002-05-14 Marcos Fernando De Resende Mat Método para sexagem de espermatozóides usando a via clássica do sistema complemento, com eliminação da via alternativa pela inativação da proteina "b"
EP1322936A2 (en) 2000-10-03 2003-07-02 California Institute Of Technology Microfluidic devices and methods of use
CA2424115A1 (en) 2000-10-05 2002-04-11 Xy, Inc. System of hysteroscopic insemination of animals
US20040031071A1 (en) * 2000-10-05 2004-02-12 Xy, Inc. System of hysteroscopic insemination of mares
US6563583B2 (en) 2000-10-12 2003-05-13 Amnis Corporation Multipass cavity for illumination and excitation of moving objects
JP2004537712A (ja) 2000-10-18 2004-12-16 バーチャル・アレイズ・インコーポレーテッド 多重細胞分析システム
CA2426182C (en) 2000-10-23 2007-03-13 Py Patent, Inc. Fluid dispenser having a housing and flexible inner bladder
CA2428326A1 (en) 2000-11-09 2002-05-16 University Of Guelph Mammalian sex selection using genetic modification
CA2454340A1 (en) 2000-11-22 2002-05-30 Pharmacia Corporation Methods and apparatus for producing gender enriched sperm
SE0004777D0 (sv) 2000-12-22 2000-12-22 Amersham Pharm Biotech Ab Separation of X-and Y-sperm cells
US20020064809A1 (en) 2000-11-29 2002-05-30 Mutz Mitchell W. Focused acoustic ejection cell sorting system and method
US7713687B2 (en) * 2000-11-29 2010-05-11 Xy, Inc. System to separate frozen-thawed spermatozoa into x-chromosome bearing and y-chromosome bearing populations
WO2002043486A1 (en) 2000-11-29 2002-06-06 Xy, Inc. System for in-vitro fertilization with spermatozoa separated into x-chromosome and y-chromosome bearing populations
US6849423B2 (en) 2000-11-29 2005-02-01 Picoliter Inc Focused acoustics for detection and sorting of fluid volumes
US20020064808A1 (en) 2000-11-29 2002-05-30 Mutz Mitchell W. Focused acoustic energy for ejecting cells from a fluid
CA2430336A1 (en) 2000-11-30 2002-06-06 The Netherlands Cancer Institute Membrane molecule indicator compositions and methods
US6576291B2 (en) 2000-12-08 2003-06-10 Massachusetts Institute Of Technology Preparation of nanocrystallites
EP1352237A4 (en) 2000-12-15 2009-03-04 Beckman Coulter Inc ELECTROCONDUCTIVE CONTAINMENT SYSTEM
US6577387B2 (en) 2000-12-29 2003-06-10 Johnson & Johnson Vision Care, Inc. Inspection of ophthalmic lenses using absorption
CN1231472C (zh) 2001-01-29 2005-12-14 日内瓦大学 嘧啶无环核苷衍生物、其制备方法及其用途
US6673095B2 (en) * 2001-02-12 2004-01-06 Wound Healing Of Oklahoma, Inc. Apparatus and method for delivery of laser light
US7029916B2 (en) 2001-02-21 2006-04-18 Maxcyte, Inc. Apparatus and method for flow electroporation of biological samples
WO2002077011A2 (en) 2001-03-12 2002-10-03 The State Of Oregon Acting By And Through The State Board Of Higher Education On Behalf Of The University Of Oregon Oxidation-reduction sensitive green fluorescent protein variants
US6706163B2 (en) 2001-03-21 2004-03-16 Michael Seul On-chip analysis of particles and fractionation of particle mixtures using light-controlled electrokinetic assembly of particles near surfaces
WO2002077637A1 (en) 2001-03-22 2002-10-03 Infigen, Inc. Sex-specific selection of sperm from transgenic animals
US7354733B2 (en) 2001-03-29 2008-04-08 Cellect Technologies Corp. Method for sorting and separating living cells
EP1245944B1 (en) 2001-03-29 2007-02-14 Sysmex Corporation Flow cytometer
WO2002082057A2 (en) 2001-04-03 2002-10-17 Micronics, Inc. Split focusing cytometer
JP2002311027A (ja) 2001-04-09 2002-10-23 Hitachi Software Eng Co Ltd ビーズ、ビーズ製造方法、フローサイトメータ及びプログラム
US6416190B1 (en) 2001-04-27 2002-07-09 University Of Chicago Apparatus for using optical tweezers to manipulate materials
US20020186375A1 (en) 2001-05-01 2002-12-12 Asbury Charles L. Device and methods for detecting samples in a flow cytometer independent of variations in fluorescence polarization
WO2002092161A1 (en) 2001-05-10 2002-11-21 Biophan, Llc Miniaturized particle analyzer
WO2002092247A1 (en) 2001-05-17 2002-11-21 Cytomation, Inc. Flow cytometer with active automated optical alignment system
US7345758B2 (en) 2001-05-17 2008-03-18 Cytopeia Apparatus for analyzing and sorting biological particles
US20020182590A1 (en) 2001-05-25 2002-12-05 Vanderbilt University Determining protein function in cell culture using RNA interference
US20030048433A1 (en) 2001-06-01 2003-03-13 Jean-Marie Desjonqueres Cytometer signal processing system and method
FR2825987B1 (fr) 2001-06-19 2003-12-12 Valois Sa Distributeur de produit fluide
US7105355B2 (en) 2001-07-18 2006-09-12 The Regents Of The University Of Michigan Flow cytometers and detection system of lesser size
WO2003008102A1 (en) 2001-07-18 2003-01-30 The Regents Of The University Of Michigan Microfluidic gravity pump with constant flow rate
FR2828281B1 (fr) 2001-08-02 2004-12-31 Biocytex Dispositif pour l'analyse d'un echantillon notamment par cytometrie de flux
AU2002320399A1 (en) 2001-09-01 2003-03-18 Pharmacia Corporation Staining and sorting genomes and chromosomes using sequence-specific polyamides
DE10151216A1 (de) 2001-10-16 2003-04-24 Zeiss Carl Jena Gmbh Verfahren zur optischen Erfassung von charakteristischen Größen einer beleuchteten Probe
US20030078703A1 (en) 2001-10-19 2003-04-24 Surromed, Inc. Cytometry analysis system and method using database-driven network of cytometers
US6838289B2 (en) 2001-11-14 2005-01-04 Beckman Coulter, Inc. Analyte detection system
US6831279B2 (en) 2001-11-27 2004-12-14 Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of National Defence Laser diode-excited biological particle detection system
AU2002361220A1 (en) 2001-12-31 2003-07-15 Institut Fur Physikalische Hochtechnologie E.V. Micro-recess array for size-dependent sorting or separation of cells suspended in a flowing medium and method for analysing the functional activity of individual cells
WO2003056330A2 (de) 2001-12-31 2003-07-10 Institut für Physikalische Hochtechnologie e.V. Zellsortiersystem zur grössenabhängigen sortierung oder separation von in einer strömenden flüssigkeit suspendierten zellen
US6780377B2 (en) 2002-01-22 2004-08-24 Dakocytomation Denmark A/S Environmental containment system for a flow cytometer
US7028591B2 (en) * 2002-01-31 2006-04-18 Fiskars Brands, Inc. Multi-function tool with spring biased implement
US6698627B2 (en) 2002-02-19 2004-03-02 Valois S.A.S. Fluid dispenser
US6849394B2 (en) 2002-02-21 2005-02-01 Minitube Of America Compositions comprising reproductive cell media and methods for using such compositions
KR20040105735A (ko) 2002-02-27 2004-12-16 더 리젠츠 오브 더 유니버시티 오브 미시간 운동성이 낮은 입자로부터 운동성 입자를 분류하는 방법및 이에 적합한 장치
US20030175980A1 (en) 2002-03-14 2003-09-18 Hayenga Jon W. Ribbon flow cytometry and cell sorting
US7223371B2 (en) 2002-03-14 2007-05-29 Micronics, Inc. Microfluidic channel network device
JP2004000144A (ja) 2002-03-29 2004-01-08 Aisin Seiki Co Ltd 細胞分離選別装置、細胞整列用基板
US20050251476A1 (en) 2002-06-28 2005-11-10 Monsanto Technology Llc Swine genetics business system
CA2489779A1 (en) 2002-07-10 2004-01-22 Applied Research Systems Ars Holding N.V. Use of compounds for increasing spermatozoa motility
MXPA05000865A (es) 2002-07-22 2005-04-28 Xy Inc Sistema para el proceso de celulas espermaticas.
MXPA05001100A (es) 2002-08-01 2005-04-28 Xy Inc Sistema de separacion de baja presion para celulas de esperma.
MXPA05001654A (es) 2002-08-15 2005-10-18 Xy Inc Citometro de flujo de alta resolucion.
US7169548B2 (en) 2002-09-13 2007-01-30 Xy, Inc. Sperm cell processing and preservation systems
JP3983151B2 (ja) 2002-09-25 2007-09-26 ダイワ精工株式会社 魚釣用スピニングリール
US20040061853A1 (en) 2002-09-27 2004-04-01 Blasenheim Barry J. Prism-based flow cytometry excitation optics
US7201875B2 (en) 2002-09-27 2007-04-10 Becton Dickinson And Company Fixed mounted sorting cuvette with user replaceable nozzle
US6941005B2 (en) 2002-11-01 2005-09-06 Coulter International Corp. Monitoring and control of droplet sorting
CA2506935A1 (en) 2002-11-20 2004-06-03 University Of Virginia Patent Foundation Isolation of sperm cells from other biological materials using microfabricated devices and related methods thereof
WO2004059282A2 (en) 2002-12-19 2004-07-15 Monsanto Technology Llc Method and means for early detection of pregnancy in animals by combination testing
MX347048B (es) 2003-03-28 2017-04-07 Inguran Llc * Aparato de muestreo digital y métodos para separar partículas.
US7335507B2 (en) 2003-03-28 2008-02-26 Monsanto Technology Llc Process for the staining of sperm
ES2541121T3 (es) 2003-05-15 2015-07-16 Xy, Llc Clasificación eficiente de células haploides por sistemas de citometría de flujo
US20050011582A1 (en) 2003-06-06 2005-01-20 Haug Jeffrey S. Fluid delivery system for a flow cytometer
EP1730523B1 (en) * 2004-03-29 2010-01-13 Inguran, LLC Use of a composition which regulates oxidation/reduction reactions intracellularly and/or extracellularly in a staining or sorting process of spermatozoa
CA2561661C (en) 2004-03-29 2015-11-24 Monsanto Technology Llc Sperm suspensions for sorting into x or y chromosome-bearing enriched populations
AR049732A1 (es) 2004-07-22 2006-08-30 Monsanto Co Proceso para enriquecer una poblacion de celulas de esperma
PT1771729E (pt) 2004-07-27 2015-12-31 Beckman Coulter Inc Acentuação da discriminação da citometria de fluxo com transformação geométrica
US20060118167A1 (en) 2004-12-03 2006-06-08 Xy, Inc. Pressure regulated continuously variable volume container for fluid delivery
US20060147894A1 (en) 2004-12-30 2006-07-06 Vicam, L.P. Jacketed vessel for holding semen for sex biasing mammals through artificial insemination and systems and methods for enhancing the probability of sex biasing using the same
US7591064B2 (en) * 2005-07-20 2009-09-22 Hitachi Global Storage Technologies Netherlands B.V. Method of fabrication for tape medium read head with unitary formation of multiple elements
US7618770B2 (en) * 2005-07-29 2009-11-17 Xy, Inc. Methods and apparatus for reducing protein content in sperm cell extenders
CN100998524A (zh) 2007-01-19 2007-07-18 北京锦绣大地农业股份有限公司 牛性控胚胎生产方法

Also Published As

Publication number Publication date
US20130137081A1 (en) 2013-05-30
ES2442382T3 (es) 2014-02-11
AR026572A1 (es) 2003-02-19
UY26449A1 (es) 2001-06-29
US7820425B2 (en) 2010-10-26
DE60017945T2 (de) 2006-06-08
US7208265B1 (en) 2007-04-24
BG106731A (bg) 2003-05-30
US20070099171A1 (en) 2007-05-03
BR0016049A (pt) 2002-08-13
US20070092860A1 (en) 2007-04-26
AU1755201A (en) 2001-06-04
EP1257168A1 (en) 2002-11-20
WO2001037655A1 (en) 2001-05-31
CN100367849C (zh) 2008-02-13
KR100757753B1 (ko) 2007-09-11
EA200200593A1 (ru) 2002-12-26
SK7222002A3 (en) 2002-11-06
KR20020075373A (ko) 2002-10-04
MXPA02005134A (es) 2002-11-07
NZ530441A (en) 2005-09-30
ES2237473T3 (es) 2005-08-01
DK1557087T3 (da) 2014-01-06
PL355853A1 (pl) 2004-05-31
NZ519078A (en) 2004-02-27
US20110004052A1 (en) 2011-01-06
CN1424873A (zh) 2003-06-18
EP1557087B1 (en) 2013-10-16
AU782919B2 (en) 2005-09-08
EP1257168B1 (en) 2005-02-02
US20030157475A1 (en) 2003-08-21
CA2391370C (en) 2009-08-11
EE200200264A (et) 2003-06-16
CA2391370A1 (en) 2001-05-31
HUP0203920A2 (hu) 2003-03-28
MX338434B (es) 2016-04-15
DE60017945D1 (de) 2005-03-10
CZ20021770A3 (cs) 2002-11-13
EP1557087A1 (en) 2005-07-27
ATE288197T1 (de) 2005-02-15
JP2003530312A (ja) 2003-10-14
IL149802A0 (en) 2002-11-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1257168B1 (en) Method of cryopreserving selected sperm cells
RU2303354C2 (ru) Искусственное осеменение млекопитающих малым количеством разделенных по полу сперматозоидов
Graham Cryopreservation of stallion spermatozoa
Johnson et al. Storage of boar semen
Schenk et al. Cryopreservation of flow-sorted bovine spermatozoa
US7838210B2 (en) Sperm suspensions for sorting into X or Y chromosome-bearing enriched populations
US6641526B1 (en) Development of normal offspring from oocytes injected with freeze-dried spermatozoa
Ponglowhapan et al. Effects of Equex STM Paste on the quality of frozen-thawed epididymal dog spermatozoa
Okazaki et al. Improved conception rates in sows inseminated with cryopreserved boar spermatozoa prepared with a more optimal combination of osmolality and glycerol in the freezing extender
AU2005203165B2 (en) Method of cryopreserving selected sperm cells
Strelchenko et al. Cryopreservation of Mauritian cynomolgus macaque (Macaca fascicularis) sperm in chemically defined medium
JP2000507920A (ja) 精子洗浄液製品におけるアラビノガラクタンの使用
Niasari-Naslaji et al. Effect of lactose extender with different levels of osmolality and pH on the viability of Bactrian camel (Camelus bactrianus) spermatozoa
Arshadi et al. The effects of Xylose monosaccharide on Water Buffalo (Bubalus bubalis) epididymal sperm kinetic parameters at 37˚ C
RU2442324C2 (ru) Способ получения нескольких эмбрионов и млекопитающего заданного пола
Phetudomsinsuk et al. Effects of extenders and glutamine on the cooled storage of semen of Thai native crossbred and full-size purebred horses
Monteiro et al. Equine Semen Biotechnology
RU2244525C2 (ru) Развитие нормального потомства из ооцитов, инъецированных обработанными сушкой вымораживанием сперматозоидами
Johnson et al. Storage of boar semen.[Erratum: Dec 1, 2000, v. 64 (1/2), p. 133-134.]

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification