DE2025748B2 - Verfahren zur Herstellung eines EnzymProduktes (a-Amylase) und seiner Verwendung - Google Patents
Verfahren zur Herstellung eines EnzymProduktes (a-Amylase) und seiner VerwendungInfo
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- C12N9/2411—Amylases
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- C11D—DETERGENT COMPOSITIONS; USE OF SINGLE SUBSTANCES AS DETERGENTS; SOAP OR SOAP-MAKING; RESIN SOAPS; RECOVERY OF GLYCEROL
- C11D3/00—Other compounding ingredients of detergent compositions covered in group C11D1/00
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- C11D3/386—Preparations containing enzymes, e.g. protease or amylase
Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung eines eine alpha-Amylase enthaltenden Enzym-Produktes.
Ihr liegt die Aufgabe zugrunde, ein Enzym-Produkt der genannten Art zur Verfügung zu stellen, das eine
gute Aktivität und Stabilität bei hohen pH-Werten, niedrigen Konzentrationen an Ca++-Ionen und hoher
Temperatur besitzt. Die Erfindung betrifft auch eine spezielle Verwendung eines derartigen Enzym-Produkts.
Alpha-Amylasen werden weithin für industrielle
Zwecke eingesetzt, wo eine partielle Hydrolyse von Stärke verlangt wird. Ihre Wirkung besteht in der
Herabsetzung der Viskosität eines Stärkegels oder in der Auflösung von Stärke, die an Geweben oder
Gegenständen haftet.
Spezielle Anwendungen von alpha-Amylasen in der
Industrie sind das Entschlichten in der Textilindustrie, die Verflüssigung von Brauereizusätzen oder Gerste in
der Brauereiindustrie, die Verflüssigung von Stärke bei der Erzeugung von Dextrose- oder Glucosesirupen
u. dgl.
Amylasen werden auch in Reinigungsmitteln verarbeitet, z. B. Netz- oder Spülmitteln, wo sie die
Entfernung von stärkehaltigen Flecken oder Stärke enthaltenden Materialien erleichtern sollen, die an
Gegenständen haften. ■*"
Die Quellen für solche Amylasen-Präparate können tierischer, pflanzlicher oder mikrobieller Art sein; eine
bevorzugte Quelle ist Bazillus subtilis. Die Gründe hierfür liegen in der guten Wärme-Stabilität, die das von
dieser Bakterie erzeugte Enzym aufweist und in dem ziemlich breiten pH-Bereich der gezeigten Stabilität
und Aktivität (s. »DIE STÄRKE«, 19 [1967], 2).
Ein Nachteil dieses Enzyms und auch der anderen bekannten alpha-Amylasen besteht jedoch darin, daß
für die Stabilität des Enzyms Ca++ notwendig ist, eine
Tatsache, welche die Verwendung der bekannten Enzyme in Gegenwart Ca++-abscheidender Mittel
schwierig oder unmöglich macht (s. »DIE STÄRKE«, 20 [19681324).
Obwohl die Wärmestabilität des B.-subtilis-Enzyms
£»ut ist. wäre eine bessere Wärmestabilität für die
Industrie von außerordentlichem Wert denn sie würde eine höhere Reaktionstemperatur und damit eine
höhere Reaktionsgeschwindigkeit zulassen (s. »DIE STÄRKE« 19[1967], 291).
Schließlich ist B.-subtilis-Amylase für die Verwendung in Reinigungsmitteln ungeeignet, deren pH-Wert
höher ist als 9, denn bei so hohen pH-Werten ist die Aktivität und Stabilität sehr gering.
Es wurde nun gefunden, daß überraschenderweise
Es wurde nun gefunden, daß überraschenderweise
ίο B. licheniformis eine alpha-Amylase erzeugt die im
Vergleich zur B.-subtilis-Amylase verbesserte Eigenschaften aufweist und zwar hinsichtlich Wärmestabilität
sowie der Stabilität und Aktivität bei hohen pH-Werten und die anders als die bekannten alpha-Amylasen bei
hohen Konzentrationen von Ca++-abscheidenden Mitteln, z. B. Tripolyphosphaten oder Äthylendiamintetraessigsäure,
beständig ist.
Es wurde daher eine große Reihe jener Stämme von B. licheniformis, die aus bekannten Sammlungen von
Kulturen zugänglich sind, in bezug auf ihre Erzeugung von Amylase untersucht. Dabei wurde ausnahmslos
gefunden, daß sie eine alpha-Amylase mit den vorgenannten verbesserten Eigenschaften erzeugen.
Die Erfindung beruht daher auf der Erkenntnis, daß Stämme von B. licheniformis fähig sind, eine derartige
Amylase zu erzeugen.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung der neuartigen alpha-Amylase besteht darin, daß man
einen Stamm von Bazillus licheniformis in einem geeigneten Nährmedium züchtet und danach ggf. ein
Enzym-Produkt aus der Nährbrühe isoliert.
Bei einer besonderen Ausführungsform des erfindungsgemäßen Verfahrens wird Bazillus licheniformis
NCIB 8061 eingesetzt.
Weitere Beispiele für bei der Erfindung mit Vorteil einsetzbare Stämme sind: Bazillus licheniformis
NCIB 8059, ATCC 6634, ATCC 6598, ATCC 11945, ATCC 8480 oder ATCC 9945a.
Die folgenden Versuchsergebnisse wurden bei Vergleichsversuchen erhalten, die mit Enzymen aus einem
repräsentativen Stamm von B. licheniformis und einem handelsüblichen Enzym-Präparat aus einem Stamm von
B. subtilis durchgeführt wurden.
Alpha-Amylase aus
B. licheniformis B. subtilis
so Molekular-Gewicht: | 10-20000 | 96 000 |
Temperatur der höchsten | ||
Aktivität bei einer Reak | ||
tionszeit von 10 Minuten | ||
und den pH-Werten: | ||
55 6,2 | 9O0C | 7O0C |
8,8 | 9O0C | 700C |
Aktivität bei pH 8,8 in % | ||
der Aktivität bei pH 6,2 | ||
B0 bei Optimal- | 100% (90°C) | 20% (7O0C) |
Temp eratur | ||
und bei 37°C | 53% | 9% |
Restaktivität nach | über 50% | etwa 10% |
Behandlung in einer
4prozentigen Lösung von
Natriumtripolyphosphat
bei 500C und pH 9 über
30 Minuten
4prozentigen Lösung von
Natriumtripolyphosphat
bei 500C und pH 9 über
30 Minuten
Fortsetzung
Alpha-Amylase | aus | |
B. licheniformis | B. subtilis | |
Restaktivität nach | ||
Inkubination einer | ||
Enzym-Lösung in ent | ||
ionisiertem Wasser über | ||
120 Minuten bei 75°C | ||
und pH 8,8 | 100% | 27% |
und pH 5,9 | 86% | 0% |
Für das neue, erfindungsgemäß hergestellte alpha-Amylase-Enzym
ist es also charakteristisch, daß es gute Aktivität bei hohen pH-Werten, z. B. 9, und gute
Stabilität in Gegenwart von Natriumtripolyphosphat aufweist.
Zwecks Erzeugung von alpha-Amylase kann man
einen Stamm von Bazillus licheniformis in einem Nährmedium züchten, das assimilierbaren Kohlenstoff
und Stickstoff neben anderen wichtigen Nährstoffen enthält; die Zusammensetzung des Mediums entspricht
den bekannten Regeln. Geeignete Kohlenstoff-Quellen sind Kohlenhydrate, wie Saccharose, Glucose und
Stärke oder Kohlenhydrate enthaltende Materialien, wie Getreidekörner, Malz, Reis und Hirse. Die
Konzentration der Kohlenhydrate im Medium kann in weitem Bereich schwanken, z. B. bis 25% nach oben und
bis 1—5% nach unten; 10—20% sind hingegen üblich. Das bevorzugte Kohlenhydrat ist Stärke oder partiell
hydrolysierte Stärke. Der Prozentgehalt wird als Dextrose berechnet
Die Stickstoff-Quelle im Nährmedium kann anorganischer und/oder organischer Natur sein. Geeignete
anorganische Stickstoff-Quellen sind Nitrate und Ammoniumsalze. Von den organischen Stickstoff-Quellen
wird eine große Anzahl gewöhnlich bei Fermentationsprozessen mit gleichzeitiger Züchtung von Bakterien
eingesetzt. Beispiele hierfür sind Soyabohnen-Mehl,
Baumwollsamen-Mehl, Erdnuß-Mehl, Casein, Maiswasser, Hefeextrakt, Harnstoff und Albumin. Zusätzlich soll
das Medium auch die üblichen Spurensubstanzen enthalten.
Die Züchtung wird bei einer Temperatur zwischen 25 und 50, vorzugsweise zwischen 30 und 400C durchgeführt.
Da die Züchtung vorzugsweise unter aeroben Bedingungen vorgenommen wird, ist es üblicherweise
notwendig, während des Bakterienwachstums in den Fermentations-Tanks künstlich zu belüften. Die Belüftungsgeschwindigkeit
ist nicht kritisch, aber man wendet gewöhnlich ein Volumen Luft auf ein Volumen Brühe pro Minute an.
Allgemein erhält man die besten Ausbeuten an alpha-Amylase nach einer Kultivierungszeit von 1 bis 7
Tagen.
Alpha-Amylase enthaltende Präparate werden aus der Fermentations-Brühe nach an sich bekannten
Methoden gewonnen, z. B. durch die Herstellung eines flüssigen Präparates durch Reinigung der Blrühe mittels
Zentrifugieren oder Filtrieren und Zugabe von Konservierungsmitteln
zu der gereinigten Flüssigkeit, oder durch die Herstellung eines festen Präparates durch
Zusatz eines enzymfällenden Mittels, wie Ammoniumsulfat, Natriumsulfat oder mit Wasser mischbare
organische Lösungsmittel, wie Äthanol oder Aceton, zu der gereinigten Brühe und Abtrennen und Trocknen des
Niederschlags.
Erfindungsgemäß hergestellte Amylase-Präparate können für alle Anwendungsgebiete verwendet werden,
bei denen gewöhnlich Amylase aus B. subtilis eingesetzt wird.
Ihre Verwendung hat besondere Vorteile bei Vorliegen einer oder mehrerer der folgenden Bedingungen:
hohe Temperatur, hoher pH (bis zu etwa 10) und
ίο niedrige Konzentration von Ca++ (Gegenwart von
abscheidenden Mitteln wie Natriumtripolyphosphat oderÄthylendiamintetraessigsäure).
Beispiele für spezielle Anwendungsmöglichkeiten der neuen Amylase sind: Entschlichten, Verflüssigen von
Stärke zur Herstellung von Stärke-Hydrolysaten und Verarbeiten in Reinigungsmitteln für Wasch- und
Spül-Zwecke.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist zusätzlich in den folgenden speziellen Beispielen erläutert. Die dort
festgestellten Aktivitäten werden wie folgt ermittelt:
Die alpha-Amylase-Aktivität gegenüber löslicher
Stärke wird mittels einer abgeänderten SKB-Methode, die bei 370C durchgeführt wird, festgestellt. Die
SKB-Methode ist in »Cereal Chemistry« 16, 712 (1939) beschrieben. Bei der hier angewandten Methode wurde
beta-Amylase nicht zugesetzt; im einzelnen verläuft sie wie folgt:
Die Lösungen aller Reagentien müssen mit destilliertem Wasser bereitet werden.
Eine Jod-Standard-Lösung stellt man her, indem man 11 g kristallines Jod und 22 g Kaliumjodid in Wasser
auflöst und auf ein Volumen von 500 ml verdünnt. Eine verdünnte Jod-Lösung bereitet man durch Mischen von
2 ml der Jod-Standard-Lösung mit 20 g Kaliumjodid und Verdünnen mit Wasser auf ein Volumen von 500 ml. Die
verwendete Puffer-Salz-Lösung hat die folgende Zusammensetzung: 9,36 g NaCl, 69,00 g KH2PO4, 4,80 g
Na2HPC>4 · 2 H2O werden in Wasser gelöst und auf ein
Liter aufgefüllt
Eine gepufferte Stärke-Lösung wird auf folgende Weise hergestellt:
6,95 g lösliche Stärke (z. B. Merck, Amylum solubile, Soluble Starch, Erg. B. 6), berechnet als Trockensubstanz,
wird mit etwa 50 ml Wasser zu einem Brei angerührt. Der Brei wird allmählich zu etwa 200 ml
kochendem Wasser zugesetzt. Wenn die Stärke sich vollkommen gelöst hat, wird die Lösung gekühlt und in
einen Kolben von 1 Liter Inhalt übergeführt. Dann werden 35 ml Puffer-Salz-Lösung zugegeben, und es
wird zur Marke mit Wasser aufgefüllt Schließlich wird die Lösung mit Toluol gesättigt Der pH der fertigen
Lösung wird auf 6 eingestellt. Die Stärke-Lösung muß so frisch wie möglich bereitet werden, aber sie kann im
Kühlschrank bis zu 24 Stunden aufbewahrt werden.
20ml der gepufferten Stärke-Lösung werden in ein Test-Rohr (Durchmesser 24 mm, Länge 190 mm) eingemessen
und in einen Wasser-Thermostaten mit der Temperatur von 370C gestellt. Nach einer Vorwärmung
von wenigen Minuten gibt man 10 ml der zu untersuchenden Amylase-Lösung (oder ν ml Amylase-Lösung
+ (10 — v^ml Wasser) hinzu. Der Rohr-Inhalt
wird gut durchgemischt und zur gleichen Zeit eine Stoppuhr in Gang gesetzt. In geeigneten Zeitintervallen
gibt man 1 ml der Reaktionsmischung zu 5 ml der verdünnten Jod-Lösung, schüttelt und überträgt in ein
Vergleichsrohr. Dann vergleicht man die Farbe mit der Standard-Farbe. Wird der Farb-Endpunkt in weniger als
10 Minuten erreicht, dann verwendet man eine
verdünntere Amylase-Lösung oder ein kleineres Volumen
der Amylase-Lösung.
Als Kolorimeter wird einer mit dem Glas-Amylase-Standard
verwendet (vgl. Redfern, »Methods for determination of alpha-amylase«, Cereal Chemistry 24,
259 [1947]).
Berechnung
Die alpha-Amylase-Aktivität der Probe berechnet
man an Hand der folgenden Formel:
1430 · V
t · a ■ ν
t · a ■ ν
in welcher bedeuten:
A: alpha-Amylase-Aktivität in Einheiten pro Gramm
oder Milliliter,
t: Zeit in Minuten bis zur Erreichung des Farb-Endpunkts,
t: Zeit in Minuten bis zur Erreichung des Farb-Endpunkts,
a: Menge der Probe in Gramm oder Milliliter,
V: Volumen, auf das die Probe verdünnt wurde (ml),
v: Volumen der verwendeten Amylase-Lösung (ml).
V: Volumen, auf das die Probe verdünnt wurde (ml),
v: Volumen der verwendeten Amylase-Lösung (ml).
Der Faktor »1430« ist nicht genau konstant und hängt zu einem gewissen Grade von der Qualität der
verwendeten Stärke ab. Für genaue Bestimmungen sollte der Wert des Faktors mit Hilfe einer Aufbereitung
aus Standard-Amylase mit bekannter Aktivität berechnet werden.
Für Analysen unter anderen pH-Werten als hier erwähnt wird ein Puffer-System verwendet, das für
diesen pH-Wert speziell geeignet ist.
In jedem Beispiel wird die alpha-Amylase-Aktivität bei pH-Werten von 5 bis 10 unter Anwendung der
obenerwähnten Methode bestimmt. Der untere Grenzwert, d. h. pH 5, und der obere Grenzwert, d. h. pH 10,
sind sehr ungenau, insbesondere der Wert bei pH 5, weil dort die Kurve der Aktivität sehr steil ansteigt, so daß
schon eine kleine Änderung des pH zu einer großen Änderung der Aktivität führt.
Kartoffel-Stärke | 40 g/L |
Soyabohnen-Mehl | 30 g/L |
Gemahlene Gerste | 100 g/L |
CaCO3 | 5 g/L |
Soyabohnen-Öl | 0,5 ml/L |
Die alpha-Amylase-Aktivität gegenüber löslicher Stärke wird bei verschiedenen pH-Werten unter
Anwendung der oben beschriebenen Methode mit geeigneten Puffer-Systemen bestimmt
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 5 ausgedrückt
Beispiel 1
Bazillus licheniformis NCIB 8061
Bazillus licheniformis NCIB 8061
wird bei 300C auf einem rotierenden Rütteltisch
(220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist
und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung enthält:
50
55
Das Medium wird mit alpha-Amylase verflüssigt und bei 120° C 45 Minuten sterilisiert.
Nach 7tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 300 Einheiten/ml. Die Flüssigkeit wird durch
Zentrifugieren gereinigt; man setzt 0,5% CaCb zu und stellt den pH auf 7,6 ein. Durch Zusatz von Aceton auf
eine Konzentration von 64 Prozent wird das Enzym bei 2°C gefällt und danach durch Zentrifugieren aus der
Flüssigkeit abgetrennt. Man trocknet im Exsiccator und erhält ein Pulver mit einer alpha-Amylase-Aktivität von
55 000 Einheiten/g.
pH | 5 | 6 | 7 | S | 9 | 10 |
% Aktivität | 100 | 92 | 87 | 77 | 50 | 6 |
10 Es wurde die Stabilität des Enzyms in einer Lösung
mit 4 Prozent Natriumtripolyphosphat bestimmt Ein Teil einer Lösung des Enzyms in Leitungswasser wird
mit 3 Teilen einer Lösung von Natriumtripolyphosphat in destilliertem Wasser, das auf 500C vorerwärmt ist,
gemischt; das Gemisch hat ein pH von 93- Dann wird die Mischung 30 Minuten in ein Wasserbad mit 500C
gestellt Nach der Inkubation wird die Rest-Aktivität bestimmt Es verblieben 85% der ursprünglichen
20 Aktivität Proteolytische Aktivität: Ein halbquantitativer Proteinase-Test
zeigte, daß das Enzym-Präparat beträchtliche proteolytische Aktivität bei pH 10 enthielt
25 Beispiel 2
Bazillus licheniformis NCIB 8059
Bazillus licheniformis NCIB 8059
wird bei 3O0C auf einem rotierenden Rütteltisch
(220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist
und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung enthält:
Leitungswasser
Kartoffel-Stärke 200 g/L
Soyabohnen-Mehl 75 g/L
Na2HPO4 · 12 H2O 9 g/L
KH2PO4 1,5 g/L
Pluronic 0,1 ml/L
40 Das Medium wird mit alpha-Amylase verflüssigt und 90 Minuten bei 120° C sterilisiert
Nach 7tägigsr Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 120 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylase-Aktivität gegenüber löslicher Stärke wird bei verschiedenen pH-Werten unter
Anwendung der modifizierten, obenerwähnten SKB-M ethode bestimmt.
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 5 ausgedrückt:
pH 5 6 7 8 9 10
100 100 97 95 50 18
Es wird die Stabilität in einer Lösung mit 4 Prozent Natriumtripolyphosphat bestimmt Ein Teil der Kultur-Flüssigkeit
(gegebenenfalls nach Verdünnung mit Leitungswasser) wird mit 3 Teilen einer Lösung von
Natriumtripolyphosphat in destilliertem Wasser, das auf 50° C vorerwärmt ist, vermischt; das Gemisch hat ein pH
von 9,3. Danach wird die Mischung 30 Minuten in ein Wasserbad mit 50°C gestellt. Nach der Inkubation wird
dit Rest-Aktivität ermittelt
Es verblieben etwa 60 Prozent der ursprünglichen Aktivität.
Ein halbquantitativer Proteinase-Test zeigte, daß die Kultur-Flüssigkeit beträchtliche proteolytische Aktivität
bei pH 10 besitzt.
5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
<35 | 100 | 98 | 98 | 55 | <35 |
Beispiel 3
Bazillus licheniformis ATCC 6634
Bazillus licheniformis ATCC 6634
wird bei 30°C auf einem rotierenden Rütteltisch
(220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben gezüchtet, der mit Pralischeiben ausgerüstet ist
und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung enthält:
Leitungswasser
Kartoffel-Stärke 40 g/L
Gemahlene Gerste 100 g/L
Soyabohnen-Mehl 30 g/L
Na2SO4 1 g/L
CaCO1 4 g/L
Pluronic 0,1 ml/L
Das Medium wird mit alpha-Amylase verflüssigt und
45 Minuten bei 1200C sterilisiert.
Nach 6tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 30 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylase-Aktivität wird bei verschiedenen
pH-Werten bestimmt.
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 6 ausgedrückt:
pH
Ein halbquantitativer Proteinase-Test zeigte, daß die Kultur-Flüssigkeit beträchtliche proteolytische Aktivitäten
bei pH 10 besitzt.
Beispiel 4
Bazillus licheniformis ATCC 6598
Bazillus licheniformis ATCC 6598
wird bei 300C auf einem rotierenden Rütteltisch
(220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist
und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung
enthält:
Leitungswasser
Kartoffel-Stärke 40 g/L
Gemahlene Gerste 100 g/L
Soyabohnen-Mehl 30 g/L
Na2SO4 1 g/L
CaCOj 4 g/L
Pluronic 0,1 ml/L
Das Medium wird mit alpha-Amylase verflüssigt und 45 Minuten bei 1200C sterilisiert.
Nach 6tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 450 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylasc-Aktivität wird bei verschiedenen
pH-Werten bestimmt.
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 6 ausgedrückt:
pH
Die Stabilität in einer Lösung mit 4 Prozent Natritimtripolyphosphal wird wie in Beispiel 2 beschrieben
ermittelt.
Es verblieben 62 Prozent der ursprünglichen Aktivität.
Ein halbquantitativer Protcinasc-Tcst zeigte, daß die Kultur-Flüssigkeit bei pH 10 niedrige proteolytische
Aktivität besitzt.
5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
50 | 100 | 100 | 93 | 38 | 13 |
Beispiel 5
Bazillus licheniformis ATCC 11945
Bazillus licheniformis ATCC 11945
wird bei 300C auf einem rotierenden Rütteltisch
■> (220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben
gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung
enthält:
Leitungswasser
to Kartoffel-Stärke 40 g/L
Gemahlene Gerste 100 g/L
Soyabohnen-Mehl 30 g/L
Na2SO4 1 g/L
Na2SO4 1 g/L
CaCOj 4 g/L
ι? Pluronic 0,1 ml/L
Das Medium wird mit alpha-Amylase veiflüssigt und 45 Minuten bei 120°C sterilisiert.
Nach 6tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 90 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylase-Aktivität wird bei verschiedenen pH-Werten bestimmt.
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 6 ausgedrückt:
pH
5
40
40
6
100
100
7
93
93
8
78
78
9
48
48
10
Die Stabilität in einer Lösung mit 4 Prozent j» Natriumtripolyphosphat wird wie in Beispiel 2 beschrieben
ermittelt.
Es verbleiben etwa 76 Prozent der ursprünglichen Aktivität.
Ein halbquantitativer Proteinase-Test zeigte, daß die ir>
Kultur-Flüssigkeit bei pH 10 beträchtliche proteolytische Aktivität besitzt.
Beispiel 6
Bazillus licheniformis (Bernlohrs Stamm A5)
Bazillus licheniformis (Bernlohrs Stamm A5)
wird bei 300C auf einem rotierenden Rütteltisch
(220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist
und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammenset-
4> zung enthält:
Leitungswasser
Kartoffel-Stärke 40 g/L
Gemahlene Gerste 100 g/L
Soyabohnen-Meh! 30 g/L
-,<> Na2SO4 1 g/L
CaCO3 4 g/L
Pluronic 0,1 ml/L
Das Medium wird mit alpha-Amylase verflüssigt und 45 Minuten bei 1200C sterilisiert.
Nach 7tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 30 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylase-Aktivität wird bei verschiedenen pH-Werten bestimmt.
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei
pH 6 ausgedrückt:
pH
5 6 7
90 100 92
90 100 92
8 9 10
96 60 < 35
Ein halbquantitativcr Protcinasc-Tcst zeigte, daß die
Kultur-Flüssigkeil bei pH 10 beträchtliche proteolytische Aktivität besitzt.
Beispiel 7 Bazillus licheniformis ATCC 8480
wird bei 30°C auf einem rotierenden Rütteltisch (220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben
gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung
besitzt:
Leitungswasser
Kartoffel-Stärke 100 g/L
Gemahlene Gerste 50 g/L
Soyabohnen-Meh! 20 g/L
Natriumcaseinat 10 g/L
Na2HPO4 · 12H2O 9 g/L
Pluronic 0,1 ml/L
Das Medium wird mil alpha-Amylase verflüssigt und
45 Minuten bei 120°C sterilisiert.
Nach 6tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 140 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylase-Aktivität wird bei verschiedenen
pH-Werten bestimmt.
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 6 ausgedrückt:
pH
5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
35 | 100 | 100 | 95 | 52 | 16 |
Die Stabilität in einer Lösung mit 4 Prozent Natriumtripolyphosphat wird wie in Beispiel 2 beschrieben
ermittelt.
Es verbleiben etwa 70% der ursprünglichen Aktivität.
Ein halbquantitativer Proteinase-Test zeigte, daß die Kulturflüssigkeit beträchtliche proteolytische Aktivität
bei pH 10 besitzt.
Beispiel 8 Bazillus licheniformis ATCC 9945a
wird bei 30° C auf einem rotierenden Rütteltisch (220 U/Min.) in einem 500 ml fassenden Erlenmeyer-Kolben
gezüchtet, der mit Prallscheiben ausgerüstet ist und 100 ml eines Mediums der folgenden Zusammensetzung
besitzt:
Leitungswasser
Kartoffel-Stärke 100 g/L
Gemahlene Gerste 50 g/L
Soyabohnen-Mehl 20 g/L
Natriumcaseinat 10 g/L
Na2HPO4 · 12H2O 9 g/L
Pluronic 0,1 ml/L
Das Medium wird mit alpha-Amylase verflüssigt und 45 Minuten bei 1200C sterilisiert.
Nach 7tägiger Züchtung beträgt die Ausbeute an Amylase 40 Einheiten/ml.
Die alpha-Amylase-Aktivität wird bei verschiedenen pH-Werten bestimmt.
5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
90 | 100 | 97 | 96 | 77 | 50 |
Die Ergebnisse werden in Prozent der Aktivität bei pH 6 ausgedrückt:
pH
Ein halbquantitativer Proteinasc-Test zeigte, daß die
Kultur-Flüssigkeit bei pH 10 beträchtliche proteolytische Aktivität besitzt.
B e i s ρ i e 1 9
Den Vorteil von B.-licheniformis-Amylase gegenüber
einer B.-subtilis-Amylase für Spülzwecke zeigt das folgende Beispiel.
L ist eine B.-licheniformis-Amylase,
S ist eine handelsübliche, aus B. subtilis erzeugte Amylase.
Man überzieht Uhrgläser mit einer Mischung aus: Leitungswasser 250 ml, NaCl 1,0 g, Milch 70 ml und
angemaischtem Kartoffelpulver 30 g. Man erhitzt 1 Minute auf 100°C und rührt, bis die Masse homogen
geworden ist. Dann überzieht man entfettete Uhrgläser mit 0,5 g dieser Mischung und trocknet 30 Minuten bei
50° C.
j Man stellt ein Waschmittel der folgenden Zusammensetzung
her:
Natriumtripolyphosphat 25%
Natriummetasilikat 20%
jo Trinatriumphosphat 10%
Natriumbicarbonat 42%
Tenside (äthoxyliertes Nonylphenol) 3%
Das Waschmittel wird mit einer Konzentration von 0,2% in Leitungswasser angewandt.
1-Liter-Proben der Waschmittel-Lösung werden auf 6O0C erwärmt, dann gibt man Enzym in geeigneten
Mengen hinzu. Dann überführt man die Mischung in Kochbecher, die eine Rührvorrichtung besitzen, und
stellt in einen Wasser-Thermostaten, der bei 60° C gehalten wird.
Die Uhrgläser werden in die Enzym-Waschmittel-Lösung eingetaucht und unter Rühren 20 Minuten bei 60° C
erwärmt (70 U/Min.).
Man wäscht die Gläser, nimmt sie auf, spült und trocknet sie und prüft durch Augenschein. Die
Ergebnisse werden in einer graduierten Skala aufgetragen, in der »0« keine Änderung und »5« völlige
Reinigung der Uhrgläser bedeuten:
Die folgenden Ergebnisse wurden erzielt:
Enzym-Konzentration
in Einheiten/Liter
in Einheiten/Liter
0 500 1500
Enzym L
Enzym S
Enzym S
Claims (3)
1. Verfahren zur HerFtellung eines eine alpha-•
Amylase enthaltenden Enzym-Produktes, das eine gute Aktivität und Stabilität bei hohen pH-Werten,
niedrigen Konzentrationen an Ca++-Ionen und hoher Temperatur besitzt, dadurch gekennzeichnet,
daß man einen Stamm von Bazillus licheniformis in einem geeigneten Nährmittel züchtet und danach ggf. ein Enzym-Produkt aus der
Fermentations-Brühe isoliert
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man Bazillus licheniformis NCIB 8061,
NCIB 8059, ATCC 6634, ATCC 6598, ATCC 11945, ATCC 8480 oder ATCC 9945a einsetzt
3. Verwendung eines nach den Ansprüchen 1 und 2 erhaltenen alpha-Amylase enthaltenden Enzym-Produktes
in Reinigungsmitteln.
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