JP4202250B2 - 血液脳関門輸送を調節するための組成物および方法 - Google Patents

Description

（関連出願の相互参照）
本願は、２００１年７月２５日出願の米国特許出願第６０／３０８，００２号の優先権を主張する。これらの内容は、これらの全体において、本明細書中に参考として各々援用される。

（発明の分野）
本発明は、化合物の血液脳関門輸送を調節するための組成物および方法に関する。さらに、本発明は、血液脳関門を横切る輸送を調節するのに有用な化合物を同定するためのスクリーニングアッセイを提供する。

（発明の背景）
１９８０年代初頭、メラノトランスフェリン（ｍｅｌａｎｏｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎ（ＭＴｆ））は、正常組織において発現されないか、またはわずかだけ発現するかのいずれかであるが、新生生物細胞（特に、悪性黒色腫細胞）および胎児組織において非常に多く見出される腫瘍胎児抗原として同定された（Ｗｏｏｄｂｕｒｙら、Ｐ．Ｎ．Ａ．Ｓ．ＵＳＡ，７７：２１８３−２１８７（１９８０））。より最近では、正常組織（汗腺管、肝臓の内皮細胞および内皮ならびに脳の反応性ミクログリアを含む）において同定されているヒトＭＴｆのさらなる報告が存在する（Ｊｅｆｆｅｒｉｅｓら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．、７１２：１２２−１２６（１９９６）；およびＲｏｔｈｅｎｂｅｒｇｅｒら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．、７１２：１１７−１２１（１９９６））。興味深いことに、正常血清は非常に低レベルの可溶性循環ＭＴｆを含むが、増加した可溶性血清ＭＴｆは進行性アルツハイマー病を有する患者において見出された（Ｋｅｎｎａｒｄら、Ｎａｔ．Ｍｅｄ．、２：１２３０−１２３５（１９９６）；米国特許出願番号第５，９８１，１９４）。

ＭＴｆの生化学的役割および代謝は説明することが困難であることが証明された。出現に基づくと、ＭＴｆはトランスフェリン（Ｔｆ）およびラクトトランスフェリン（ラクトフェリンまたはＬｆ）に非常に類似する。ヒトにおいて、これらのタンパク質は、３７〜３９％アミノ酸配列相同性を共有する。特に、これらのタンパク質の各々は、可逆的に鉄に結合し、そしてこれらのＮ末端鉄結合ドメインは非常に類似する（Ｂａｋｅｒら、ＴＩＢＳ，１２：３５０−３５３（１９８７））。

しかし、これらのタンパク質間の機能的類似点は確認されていない。１つの点（ＴｆおよびＬｆとは違って）について、ＭＴｆは膜結合型形態および血清可溶性形態の両方で存在する。さらに、ＴｆおよびＬｆとは対照的に、ＭＴｆについての細胞レセプターは同定されていない。血清可溶性Ｔｆは、トランスフェリンレセプター（Ｔｆ−Ｒ）によって媒介されるエネルギー依存性プロセスにおいて細胞内に取り込まれることが公知である（Ｃｏｏｋら、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｅｄ．、４４：６３−７４（１９９３））。Ｌｆの内在化はまた、おそらく、レセプター媒介性プロセスによって媒介されるようである（Ｆｉｌｌｅｂｅｅｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７４（１１）：７０１１−７０１７（１９９９））。Ｌｆに対する２つの既知のレセプターはＬＲＰ１およびＲＡＧＥであるが、他のレセプターが存在するかもしれない（Ｍｅｉｌｉｎｇｅｒら、ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ，３６０：７０−７４（１９９５）；Ｓｃｈｍｉｄｔ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６９（１３）：９８８２−９８８８（１９９４））。

ＭＴｆはＴｆ−Ｒに対する代替的なリガンドであると仮定されている（米国特許第５，９８１，１９４号を参照のこと）が、この知見を確認するデータは公開されていない。さらに、種々の研究が膜結合型ＭＴｆによる細胞内への鉄輸送を確認したが、これは膜結合型ＭＴｆが生理学的レベルをはるかに超えて過剰発現された細胞においてのみ発生した（Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２６７：１２９０−１２９８（２０００））。

可溶性ＭＴｆに結合した治療剤および診断剤は、最近出願された米国仮特許出願番号第６０／２２６，２４２および同第６０／２２６，２５４に基づき、これらの教示は、全て目的のために本明細書中に参考として援用される。

血液脳関門（ＢＢＢ）は、厳密に制御されて脳を横切ることによって神経保護的機能を実施する：従って、これはまた、大脳組織への薬剤のアクセスを妨げる（それらの輸送のためのベクターの使用を必要とする）。血液脳関門（ＢＢＢ）透過性は、しばしば、中枢神経系（ＣＮＳ）への薬物またはペプチドの浸透に対する律速因子である（Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｖｉｒｏｌ．５：５５６−５６９（１９９９）；Ｂｉｃｋｅｌ，Ｕ．，Ｙｏｓｈｉｋａｗａ，Ｔ．およびＰａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．４６：２４７−２７９（２００１）を参照のこと）。脳は、ＢＢＢによって潜在的毒性物質に対して遮蔽されており、これは、タイトジャンクションによって密接に密閉される脳毛細内皮細胞によって形成される。さらに、脳毛細血管は、他の器官の毛細血管と比較して、ほとんど窓およびエンドサイトーシス小胞を有さない（Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｖｉｒｏｌ．５：５５６−５６９（１９９９）を参照のこと）。トランスフェリン、ラクトフェリンおよび低密度リポタンパク質のような、いくつかの特定のタンパク質（これらはレセプター媒介性エンドサイトーシスによって取り込まれる）を除いて、親水性巨大分子のＢＢＢの通過はほとんどない（Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｖｉｒｏｌ．５：５５６−５６９（１９９９）；Ｔｓｕｊｉ，Ａ．およびＴａｍａｉ，Ｉ．Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．３６：２７７−２９０（１９９９）；Ｋｕｓｕｈａｒａ，Ｈ．およびＳｕｇｉｙａｍａ，Ｙ．Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．Ｔｏｄａｙ ６：１５０−１５６（２００１）；Ｄｅｈｏｕｃｋ，Ｂ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１３８：８７７−８８９（１９９７）；ならびにＦｉｌｌｅｂｅｅｎ，Ｃ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：７０１１−７０１７（１９９９）を参照のこと）。

細胞内への治療剤の送達を理解し、そして改善するために、ＭＴｆ活性のレセプターおよび代謝基礎を理解することが強く所望される。ＭＴｆに対するレセプターを同定すること、ならびに細胞内への治療剤および診断剤（特に、ＭＴｆに結合した治療剤および診断剤）の送達（ならびに特に血液脳関門を横切るそれらの送達）を改善するための方法および化合物を提供することが、本発明の目的である。

（発明の簡単な要旨）
本発明は、トランスサイトーシス、エンドサイトーシスおよび化合物の血液脳関門輸送を調節するための組成物および方法を提供する。さらに、本発明は、血液脳関門を横切る輸送を調節するため、そしてＬＲＰ（例えば、ＬＲＰ１およびＬＲＰ１Ｂ）レセプターに結合した際にエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスを実施するような因子に結合体化した活性剤を送達するために有用な化合物を同定するためのスクリーニングアッセイを提供する。

１つの局面において、本発明は、低密度リポタンパク質レセプター関連タンパク質（ＬＲＰ）に結合する能力を評価することによって、ｐ９７および活性剤に結合体化したｐ９７のエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスを調節する能力について、化合物をスクリーニングするための方法を提供する。別の局面において、本発明は、ｐ９７および活性剤に結合体化したｐ９７のエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスのモジュレーターを提供する。別の局面において、本発明は、ＬＲＰレセプターに結合し、そしてＬＲＰレセプターに結合する際にエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスを実行する化合物（例えば、リガンド）の結合体を提供する。別の局面において、本発明は、細胞、細胞型、または組織のＬＲＰレセプター核酸またはＬＲＰレセプタータンパク質の発現を測定することによって、ｐ９７または活性剤に結合体化したｐ９７のエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスに対する、所定の細胞、細胞型、または組織の能力を決定するための方法を提供する。

別の局面において、本発明は、ｐ９７トランスサイトーシスのモジュレーターとして使用するための、ＬＲＰファミリーのレセプターのリガンドおよびモジュレーターを提供する。別の局面において、本発明は、血液脳関門および／または細胞内成分（特に、リソソーム）を横切って治療剤を送達するのに使用するためのＬＲＰレセプターリガンドの結合体を提供する。別の局面において、本発明は、ｐ９７を投与することによってＬＲＰレセプターの発現を調節するための方法を提供する。

１つの局面において、レセプターはＬＲＰ１レセプターである。好ましい実施形態において、このレセプターはＬＲＰ１Ｂレセプターである。

１つの実施形態において、本発明は、メラノトランスフェリンレセプター（「ＭＴｆ−Ｒ」または「ｐ９７レセプター」）を調節するか、または結合する化合物を同定するための方法を提供し、この方法は、この化合物とｐ９７レセプターとを接触させる工程、ならびにレセプターと化合物との相互作用に対するＬＲＰレセプターリガンド（例えば、ラクトフェリン、ｐ９７、ＢＳＡ、アプロチニンおよびＲＡＰ）の効果を決定する工程を包含する。別の実施形態において、１つ以上のＬＲＰレセプターリガンド（例えば、ラクトフェリン、ＲＡＰ、ＢＳＡ、アプロチニンおよびｐ９７）は、Ｐ９７レセプターと個々に接触し、そしてｐ９７レセプターと各化合物との相互作用に対する化合物の効果がそれぞれ決定される。１つの実施形態において、機能的効果はトランスサイトーシスに関する効果である。別の実施形態において、この効果はエンドサイトーシスに関する効果である。別の実施形態において、この効果は、例えば、ＲＡＰ、ｐ９７またはラクトフェリンのｐ９７レセプターへの結合における変化によって測定されるようなレセプター結合に関する。特定の実施形態において、この方法は、高スループットスクリーニングアッセイである。好ましい実施形態において、このレセプターはＬＲＰ１レセプターである。より好ましい実施形態において、このレセプターはＬＲＰ１Ｂレセプターである。

１つの実施形態において、本発明は、ＬＤＬ−Ｒレセプターファミリーリガンドのモジュレーターおよびリガンドと、メラノトランスフェリンレセプターとを接触させる工程、ならびにメラノトランスフェリンレセプターと他の結合または相互作用に影響する能力を決定する工程によって、ｐ９７レセプター活性の選択的モジュレーターを同定するための方法を提供する。好ましい実施形態において、ＬＤＬ−Ｒレセプターリガンドは、ＰＡＩ−１（プラスミノゲンアクチベーターインヒビター１型）、プラスミノゲン、ｐｒｏ−ｕＰＡ（プロ−ウロキナーゼプラスミノゲンアクチベーター）、組織因子インヒビター、ｔＰＡ（組織型プラスミノゲンアクチベーター、活性型α_２−マクログロブリン、α１＿キモトリプシン、カテプシンＧ、ラクトフェリン、ＲＡＰ（レセプター結合タンパク質（ｒｅｃｅｐｔｏｒ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ））、サイログロブリン、スポロゾイト（ｃｉｒｃｕｍｓｐｏｒｏｚｉｔｅ）タンパク質、サポシン（ｓａｐｏｓｉｎ）、ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ（ｐｏｌｙｍｉｘｉｎ Ｂ）、シュードモナス外毒素Ａ、精嚢分泌タンパク質Ａ、トロンボスポンジン−１、β−ＶＬＤＬ、キロミクロンレムナント、ＩＤＬ、Ｌｐ（ａ）、ＶＬＤＬ（超低密度リポタンパク質）、ＡｐｏＢ１００（アポリポタンパク質Ｂ１００）およびアポリポタンパク質Ｅ（ＡｐｏＥ）。さらなる実施形態において、複数のこのようなリガンドが選択され、そしてこのようなリガンドによって影響を受けるレセプターと化合物との相互作用がｐ９７に対してどのくらい類似するかに従って、このレセプターに対する化合物の選択性を評価する。さらなる実施形態において、ＬＤＬ−ＲレセプターリガンドはＬＲＰレセプターリガンドである。より好ましい実施形態において、ＬＲＰレセプターリガンドはＬＲＰ１レセプターリガンドまたはＬＲＰ１Ｂレセプターリガンドである。１つの実施形態において、結合に関する効果は、機能的効果（例えば、トランスサイトーシス、エンドサイトーシス）によって間接的に評価される。別の実施形態において、この効果は、結合における変化（例えば、ＲＡＰ、ｐ９７またはｐ９７レセプターに由来するラクトフェリン）によって測定されるようなレセプター結合に関する。特定の実施形態において、この方法は、高スループットスクリーニングアッセイである。さらなる実施形態において、この方法はＢｉｏＣｏｒｅ法である。好ましい実施形態において、このレセプターはＬＲＰ１レセプターである。より好ましい実施形態において、このレセプターはＬＲＰ１Ｂレセプターである。別の実施形態において、このスクリーニングアッセイは、ｐ９７レセプターのリガンド（好ましくはｐ９７）の競合的置換の測定である。

１つの実施形態において、メラノトランスフェリンレセプターのモジュレーターまたはリガンドは神経学的活性（例えば、神経学的障害の治療、予防または診断において有用である）を有する。他の実施形態において、メラノトランスフェリンレセプターのモジュレーターまたはリガンドは、脳内へのメラノトランスフェリン結合体化治療剤の取り込みを調節するのに有用である。なお他の実施形態において、この化合物はこのような治療剤の神経学的な副作用を減少させるのに有用である。好ましい実施形態において、この疾患または障害はアルツハイマー病である。

１つの実施形態において、ｐ９７調節化合物は、神経学的障害の治療、予防または診断において有用な神経学的活性を有する。他の実施形態において、この化合物は、脳内へのメラノトランスフェリン結合体化治療剤の取り込みを調節するのに有用である。なお他の実施形態において、この化合物は治療剤の神経学的な副作用を減少させるのに有用である。別の実施形態において、本発明は、患者において神経学的障害を治療する方法を提供し、この方法は、調節化合物の治療有効量を患者に投与する工程を包含する。

１つの実施形態において、ｐ９７結合体またはｐ９７レセプターリガンド結合体は、リソソーム蓄積症の処置において有用な治療剤を包含する。１つの実施形態において、この治療剤は、このような障害を有する患者において欠損した酵素である。１つの実施形態において、この酵素はイズロニダーゼである。別の実施形態において、本発明は、患者においてリソソーム蓄積症を処置する方法を提供し、この方法は、リソソーム蓄積症において欠損した活性を有する酵素に結合体化したｐ９７の治療有効量を、リソソーム蓄積症を有する患者に投与する工程を包含する。１つの実施形態において、モジュレーターまたはＬＲＰもしくはＬＲＰ１Ｂは、治療を調節するためか、あるいはこのような結合体の効果を増進するために同時投与される。１つの実施形態において、この結合体はｐ９７部分および酵素部分を含む融合タンパク質であり、ここで、この酵素はリソソーム蓄積症において欠損した酵素活性を提供する。１つの実施形態において、この酵素はα−Ｌ−イズロニダーゼである。１つの実施形態において、ｐ９７部分は、結合体または融合タンパク質のエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスにとって十分なｐ９７のフラグメントである。

１つの実施形態において、ｐ９７結合体またはｐ９７レセプターモジュレーター−結合体は、神経膠芽腫のようなＣＮＳ腫瘍の処置において有用な治療剤を含む。１つの実施形態において、この治療剤は癌化学療法剤である。別の実施形態において、本発明は、化学療法剤に結合体化したｐ９７の治療有効量を患者に投与することによって、脳腫瘍もしくはＣＮＳ腫瘍または神経膠芽腫を有するこの患者を処置する方法を提供する。好ましい実施形態において、この結合体はＬＲＰ１Ｂレセプターに結合する。１つの実施形態において、モジュレーターまたはＬＲＰまたはＬＲＰ１Ｂは、治療を調節するためか、またはこのような結合体の効果を増進させるために同時投与される。

別の実施形態において、本発明は、メラノトランスフェリンレセプター（「ＭＴｆ−Ｒ」）を調節する方法を提供し、この方法は、上記方法を用いて同定されたモジュレーターとＭＴｆ−Ｒとを接触させる工程を包含する。

なお別の実施形態において、本発明は、患者の脳内へのメラノトランスフェリン結合体化治療剤の取り込みを増加させる方法を提供し、この方法は、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターおよびメラノトランスフェリン結合体化治療剤を投与する工程を包含する。１つの実施形態において、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターおよびメラノトランスフェリン結合体化治療剤は同時投与される。別の実施形態において、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターおよびメラノトランスフェリン結合体化治療剤は連続投与される。

さらに別の実施形態において、本発明は、患者の脳内へのメラノトランスフェリン結合体化治療剤の取り込みを減少させる方法を提供し、この方法は、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターとメラノトランスフェリン結合体化治療剤とを投与する工程を包含し、ここで、これらは同時か、または連続してかのいずれかで投与される。特定の実施形態において、このモジュレーターは上記方法に従って最初に同定される。

本発明はまた、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターを提供し、ここでこのモジュレーターは上記方法を用いて同定される。好ましくは、このモジュレーターは、治療剤の神経学的副作用を減少させるのに有用である。

なお別の実施形態において、本発明は、メラノトランスフェリン媒介性（ＭＴｆ媒介性）の鉄の摂取量（取り込み量）を調節する化合物を同定する方法を提供し、本方法は、以下を包含する：鉄に結合しているＭＴｆ（「ホロＭＴｆ」）の存在下かつトランスフェリンの非存在下で、その化合物とその表面においてＭｔｆを発現する細胞を接触させる工程；およびその細胞への鉄摂取の量を決定する工程。特定の実施形態において、この化合物は、この細胞への鉄の摂取量を増大させる。他の実施形態において、この化合物は、この細胞への鉄の摂取量を低減させる。

別の局面において、本発明は、このようなモジュレーター、結合体およびリガンドを含む薬学的組成物、ならびにこのような薬学的組成物を使用する方法を提供する。別の実施形態において、本発明は、活性因子を血液脳関門を介して送達するかまたは活性因子を細胞内画分に送達するためのｐ９７レセプターリガンド結合体を含有する薬学的組成物を提供する。この結合体は、薬学的に受容可能なキャリアまたは希釈剤で投与され得る。

他の実施形態において、ＬＲＰ１レセプターまたはＬＲＰｌＢレセプターのペプチドリガンドを含む融合タンパク質が結合体として使用され得る。したがって、この結合体は、ｐ９７ペプチド部分とペプチド活性因子部分とを合わせたキメラ融合タンパク質であり得る。この融合脚質活性因子は治療活性を有する物質（例えば、増殖因子またはリンホカインまたはペプチド薬物）であり得る。この活性因子は、酵素または他のタンパク質であり得る。好ましい実施形態において、この融合タンパク質は、リソソーム貯蔵性疾患（ｌｙｓｏｓｏｍａｌ ｓｔｏｒａｇｅ ｄｉｓｅａｓｅ）において欠失しているかまたは活性が欠損している酵素である活性因子を含む。特に、酵素（例えば、α−Ｌ−イズノリダーゼ（α−Ｌ−ｉｄｕｎｏｒｉｄａｓｅ）またはＮ−アセチルガラクトサミン４−スルファターゼ）が企図される。本発明はまた、このようなリソソーム貯蔵性疾患を有する患者に投与される実施形態にも関する。他の実施形態において、この酵素は、ヒト疾患において欠失している酵素（例えば、ＰＫＵ（例えば、フェニラーゼ））である。他の実施形態において、この酵素は、その有益な効果について選択される（例えば、ヘパリナーゼＩは、ヘパリンの作用を限定する）。このような結合体は、合成化学反応によって代替的に結合体化され得るかまたはリンカー基によって連結され得る。当業者は、このような融合タンパク質を作製する方法を理解している。例えば、米国特許出願第ＵＳ２００１／００２５０２６Ａ１号（２００１年９月２７日公開）を参照のこと。いくつの実施形態において、この融合タンパク質は、このキメラタンパク質の全長アミノ酸配列をコードする核酸の発現から形成され得る。他の実施形態において、このキメラ融合タンパク質は、２つの部分を直接連結するペプチド結合を介して２つのペプチド部分を合わせる合成反応によって形成される。

他の実施形態において、この結合体は、代替的に、キャリアと活性因子が付着している抗体との間の非共有結合によって形成される。

本発明はまた、血液脳関門を介して活性因子を送達する方法に関連し、この方法は、ｐ９７の結合体またはエンドサイトーシスまたはトランスサイトーシスを受けるＬＲＰ１Ｂレセプターの別のリガンドを投与する工程を包含する。本発明の組成物はまた、血液眼関門もしくは血液胎盤関門を介して因子を送達するかまたは細胞内でリソソームに因子を送達するために使用され得る。

いくつかの実施形態において、本発明に従う結合体は、ｐ９７、ＲＡＰ，アプロチニン、ラクトフェリン、ＲＡＰ、またはアプロチニンあるいはＬＲＰｌＢ結合活性またはＬＲＰ結合活性を有しているそれらの一部分を含まない。いくつかの実施形態において、本発明に従う結合体は、ＰＡＩ−１、プラスミノーゲン、プロ−ｕＰＡ、組織因子インヒビター、ｔＰＡ、活性化α_２−マクログロブリン、α_１−キモトリプシン、カテプシンＧ、ラクトフェリン、サイログロブリン、スポロゾイド周囲タンパク質、サポシン（ｓａｐｏｓｉｎ）、ゲンタマイシン、ポリミキシン（ｐｏｌｙｍｉｘｉｎ）Ｂ、シュードモナス外毒素Ａ、精嚢分泌タンパク質Ａ、トロンボスポンジン−１、β−ＶＬＤＬ、カイロミクロンレムナント、ＩＤＬ、Ｌｐ（ａ）、ＶＬＤＬ（超低比重リポタンパク質）、ＡｐｏＢ１００（アポリポタンパク質Ｂ １００）およびアポリポタンパク質Ｅ（ＡｐｏＥ）、あるいはＬＲＰｌＢ結合活性またはＬＲＰ結合活性を有するそれらの一部分を含まない。

本発明のいくつかの実施形態において、この結合体は、ＰＡＩ−１、プラスミノーゲン、プロ−ｕＰＡ、組織因子インヒビター、ｔＰＡ、活性化α_２−マクログロブリン、α_１−キモトリプシン、カテプシンＧ、ラクトフェリン、サイログロブリン、スポロゾイド周囲タンパク質、サポシン、ゲンタマイシン、ポリミキシンＢ、シュードモナス外毒素Ａ、精嚢分泌タンパク質Ａ、トロンボスポンジン−１、β−ＶＬＤＬ、カイロミクロンレムナント、ＩＤＬ、Ｌｐ（ａ）、ＶＬＤＬ（超低比重リポタンパク質）、ＡｐｏＢ１００（アポリポタンパク質Ｂ １００）およびアポリポタンパク質Ｅ（ＡｐｏＥ）、あるいはＬＲＰ１Ｂ結合活性またはＬＲＰ結合活性を有するそれらの一部分を含む。

本発明の好ましい実施形態において、ｐ９７またはＬＲＰ１もしくはＬＲＰ１Ｂのリガンドまたはモジュレータは、ヒト起源または哺乳動物起源であり得る。他の実施形態において、このリガンドはヒトまたは哺乳動物からのネイティブ化合物である。他の実施形態において、このリガンドは、ネイティブリガンドすなわち内因性リガンドに対して実質的に相同性（アミノ酸配列すなわち原子構造において少なくとも６０％同一）である。他の実施形態において、このｐ９７レセプターはヒト由来である。この結合体、モジュレーター、またはリガンドが投与される被験体は、ヒトである。

（発明の詳細な説明）
（Ａ．概要）
本発明は、メラノトランスフェリン（ｍｅｌａｎｏｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎ）レセプターの活性を調節するための新規化合物、薬学的組成物および方法、ならびに、とりわけ、メラノトランスフェリン（「ＭＴｆ」もしくは「ｐ９７」）またはＬＲＰ１の他のリガンド、およびより具体的にはＬＲＰ１Ｂと結合体化した活性薬剤の、トランスサイトーシス、エンドサイトーシスおよび血液脳関門輸送を調節するための、新規化合物、薬学的組成物および方法を提供する。このような化合物、組成物および方法を同定するためのスクリーニング方法もまた提供される。本発明は、脳毛細管内皮細胞（ＢＣＥＣ）に対するメラノトランスフェリンの結合が、ラクトフェリン（Ｌｆ）、ＲＡＰおよびβ−アミロイドタンパク質によって競合的に阻害されるが、トランスフェリン（Ｔｆ）またはウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）によっては有意に阻害されないという、本明細書中に初めて開示される発見に基づく。この結合スペクトルは、ｐ９７レセプターがＬＲＰファミリーメンバーであることを確立する。この割り当ては、ｐ９７のトランスサイトーシスおよびエンドサイトーシスの機構の、本明細書中の特徴づけと一致する。

従って、ＭＴｆについてのＢＣＥＣレセプターは、以前に仮説されたようなトランスフェリンレセプター（Ｔｆ−Ｒ）ではなく、Ｌｆがｐ９７の競合的インヒビターである、無関係のクラスのレセプター（本明細書中で、「ＭＴｆ−Ｒ」または「ｐ９７レセプター」と称される）である。この驚くべき発見は、脳へのＭＴｆ取り込みについての新規の経路を提供し、そして同時に、ＢＣＥＣにおけるラクトフェリンおよび／またはβ−アミロイドタンパク質のレセプターについての新規役割（すなわち、ＭＴｆの結合および取り込み）を同定する。

本発明はまた、ＬＲＰ１Ｂが、ｐ９７のトランスサイトーシスおよびエンドサイトーシスに関与する主要なｐ９７レセプターであるという、予測されなかった発見に関する。本出願人らは、例えば、ｐ９７がＬＲＰ１Ｂレセプターに結合して、解離可能かつ競合的阻害を受ける高分子量複合体を形成することを見出した。本出願人らはまた、細胞におけるｐ９７のトランスサイトーシスおよび取り込みが、ＬＲＰ１Ｂ遺伝子の発現と相関すること、およびＬＲＰ１Ｂが、ｐ９７を用いる処理によって誘導されることを見出した。

さらに、いくつかの他の腫瘍とは対照的に、ＬＲＰ１Ｂ遺伝子は、星状細胞腫においてアップレギュレートされることが発見されている。従って、好ましい実施形態において、ｐ９７およびリガンド結合ＬＲＰ１Ｂは、このような細胞に対して活性な化学療法剤に結合体化される。

本発明の好ましい実施形態において、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性は、ｐ９７に結合体化された化合物の血液脳関門輸送に影響を与えるように調節され、そしてさらに好ましい実施形態において、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性は、メラノトランスフェリン結合体化治療剤（ＭＴｆ−ＴＡ）の脳への輸送に影響を与えるように調節される。

さらに好ましい実施形態において、血液脳関門を横切る送達の調節は、脳毛細管内皮細胞の血清表面（すなわち、血管の先端側、すなわち、血管の「内側」）上でのＭＴｆ−Ｒの活性および／または発現を調節することによって達成される。従って、本発明は、とりわけ、脳へのＭＴｆ−ＴＡの取り込みを調節する方法、脳へのＭＴｆ−ＴＡ取り込みを調節するために有用な組成物、ならびに脳へのＭＴｆ−ＴＡの取り込みのモジュレーターを同定するためのスクリーニングアッセイおよび方法を提供する。このスクリーニングアッセイおよびこのようなスクリーニングアッセイを使用して同定される化合物はまた、一般に、Ｌｆ−Ｒの発現および／または活性を調節するために使用され得、従って、本明細書中以下に開示されるような、Ｌｆ−Ｒの発現および／または活性に関連する疾患および性合を処置するために使用され得る。

血液脳関門（ＢＢＢ）は、脳へのアクセスを厳密に制御することによって、神経保護機能を果たす；結果として、これはまた、通過のためのベクターの使用を必要とする、脳組織への薬学的因子のアクセスを妨害する。本発明者らは、組換えヒトメラノトランスフェリンが、ＢＢＢの動物モデルおよび十分規定されたインビトロモデルを使用することによって、脳へ高度に輸送されることを発見した。ｐ９７のトランスサイトーシスは、明らかな内皮内分解を伴わず、ホロトランスフェリンのトランスサイトーシスよりも少なくとも１４倍高い。ｐ９７の輸送は、内皮障壁の完全性の変化ではなく、レセプター媒介性のエンドサイトーシスに起因する。本発明者らはまた、ＬＲＰのような、多数の低密度リポタンパク質レセプタータンパク質ファミリーが、ｐ９７経内皮輸送に関与することを発見した。脳蓄積、ｐ９７トランスサイトーシスの高い速度および血液中の非常に低いレベル（トランスフェリンの１００，０００分の１低い）は、ｐ９７が、薬物を脳に直接標的化するための送達系として、具体的かつ有利なキャリアであることを示す。

血液脳関門（ＢＢＢ）の透過性は、しばしば、中枢神経系（ＣＮＳ）への薬物またはペプチドの浸透についての律速因子である（Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｖｉｒｏｌ．５：５５６−５６９（１９９９）；Ｂｉｃｋｅｌ，Ｕ．、Ｙｏｓｈｉｋａｗａ，Ｔ．＆ Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．４６：２４７−２７９（２００１）を参照のこと）。脳は、ＢＢＢによって潜在的に毒性の物質に対して遮断されており、このＢＢＢは、タイトジャンクションによって密にシールされた、脳毛細管内皮細胞によって形成される。さらに、脳毛細管は、他の器官の毛細管と比較して、より少ない開口（ｆｅｎｅｓｔｒａｅ）およびより少ないエンドサイトーシス小胞（ｅｎｄｏｃｙｔｉｃ ｖｅｓｉｃｌｅ）を有する（Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ．Ｎｅｕｒｏｖｉｒｏｌ．５：５５６−５６９（１９９９）を参照のこと）。いくつかの特定のタンパク質（例えば、トランスフェリン、ラクトフェリンおよび低密度リポタンパク質（これらは、レセプター媒介性のエンドサイトーシスによって取り込まれる）とは別の、大きい親水性分子の、ＢＢＢを横切る輸送は、ほとんど存在しない（Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ Ｎｅｕｒｏｖｉｒｏｌ．５：５５６−５６９（１９９９）；Ｔｓｕｊｉ，Ａ．＆ Ｔａｍａｉ，Ｉ．Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．３６：２７７−２９０（１９９９）；Ｋｕｓｕｈａｒａ，Ｈ．＆ Ｓｕｇｉｙａｍａ，Ｙ．Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖ．Ｔｏｄａｙ ６：１５０−１５６（２００１）；Ｄｅｈｏｕｃｋ，Ｂ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１３８：８７７−８８９（１９９７）；およびＦｉｌｌｅｂｅｅｎ，Ｃ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：７０１１−７０１７（１９９９）を参照のこと）。

メラノトランスフェリンは、最初に、ヒト黒色腫抗原ｐ９７と命名されたグリコシル化タンパク質であり、この時、これは、悪性黒色腫細胞にて高レベルで見出された（Ｂｒｏｗｎ，Ｊ．Ｐ．，Ｗｏｏｄｂｕｒｙ，Ｒ．Ｇ．、Ｈａｒｔ，Ｃ．Ｅ．、Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍ，Ｉ．＆ Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍ，Ｋ．Ｅ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．７８：５３９−５４３（１９８１）；およびＢｒｏｗｎ，Ｊ．Ｐ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ２９６：１７１−１７３（１９８２）を参照のこと）。これは、後に、ヒト血清トランスフェリン、ヒトラクトフェリンおよびニワトリトランスフェリンとの高レベルの配列相同性（３７〜３９％）に起因して、Ｍｔｆと命名された（Ｂｒｏｗｎ，Ｊ．Ｐ．ら、Ｎａｔｕｒｅ ２９６：１７１−１７３（１９８２），Ｒｏｓｅ，Ｔ．Ｍ．ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．８３，１２６１−１２６５（１９８６）を参照のこと）。トランスフェリンおよびラクトフェリンとは対照的に、ｐ９７の細胞性レセプターは、同定されていない。ｐ９７は、鉄に可逆的に結合し、そして２つの形態で存在することもまた示されており、これらの形態のうち１つは、グリコシルホスファチジルイノシトールアンカーによって細胞膜に結合し、そして他方の形態は、可溶性でありかつ能動的に分泌される（Ｂａｋｅｒ，Ｅ．Ｎ．ら、ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．２９８：２１５−２１８（１９９２）；Ａｌｅｍａｎｙ，Ｒ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｓｃｉ．１０４：１１５５−１１６２（１９９３）；およびＦｏｏｄ Ｍ．Ｒ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：３０３４−３０４０（１９９４）を参照のこと）。膜結合型ｐ９７の正確な生理学的役割は、明らかに確立されていないままであるが、分泌型ｐ９７の機能は、ほぼ未開拓である（Ｓｅｋｙｅｒｅ，Ｅ．およびＲｉｃｈａｒｄｓｏｎ，Ｄ．Ｒ ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．４８３：１１−１６、（２０００）を参照のこと）。

より最近、ｐ９７ ｍＲＮＡもまた、正常なヒト組織において広範にわたり、そして唾液腺において最高レベルであることが報告された（Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ，Ｄ．Ｒ．Ｅｕｒ Ｊ Ｂｉｏｃｈｅｍ．２６７：１２９０−１２９８（２０００）を参照のこと）。正常なヒト脳において、ｐ９７は、毛細管内皮に存在するが、アルツハイマー病患者に罹患した患者由来の脳において、ｐ９７は、老人斑に関連する小グリア細胞に位置する（Ｒｏｔｈｅｎｂｅｒｇｅｒ，Ｓ．ら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．７１２：１１７−１２１（１９９６）；Ｊｅｆｆｅｒｉｅｓ，Ｗ．Ａ．ら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．７１２：１２２−１２６（１９９６）；およびＹａｍａｄａ，Ｔ．ら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．８４５：１−５（１９９９）を参照のこと）。血清は、非常に低レベルのｐ９７を含有する（Ｂｒｏｗｎ，Ｊ．Ｐ．、Ｗｏｏｄｂｕｒｙ，Ｒ．Ｇ．、Ｈａｒｔ，Ｃ．Ｅ．、Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍ，Ｉ．＆ Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍ，Ｋ．Ｅ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．７８：５３９−５４３（１９８１）。ｐ９７レベルが血清において非常に低いが、高いｐ９７レベルが老人斑において報告されるという事実は、ｐ９７が、血清中に存在する他のタンパク質よりも高い程度まで、ＢＢＢを横切ることを示す。

この仮説を調査するために、本発明者らは、動物におけるｐ９７の投与後に、脳におけるｐ９７の取り込みを評価し、そしてこれをホロトランスフェリンおよびウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）の取り込みと比較した。本発明者らは、さらに、ラット星状細胞と同時培養したウシ脳内皮細胞（ＢＢＣＥＣ）からなる、ＢＢＢの十分確立されたモデルを使用して、ｐ９７トランスサイトーシスを研究および特徴づけした（Ｆｉｌｌｅｂｅｅｎ，Ｃ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：７０１１−７０１７（１９９９）；（Ｄｅｈｏｕｃｋ，Ｍ．Ｐ．ら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．５８：１７９０−１７９７（１９９２）を参照のこと）。本発明者らは、ｐ９７取り込みを測定するために、単離したヒト脳毛細管を使用した。

インビボおよびインビトロのモデルから得られた結果は、ホロトランスフェリンよりもＢＢＢを横切るｐ９７のかなり多い通過を示し、そしてさらに、低密度リポタンパク質レセプター関連タンパク質（ＬＲＰ）が、ｐ９７の通過に関与し得ることを示す。

ｐ９７トランスサイトーシスは、トランスフェリントランスサイトーシスよりも１４倍高い。トランスサイトーシスは、温度感受性、飽和可能およびｐ９７コンフォメーション依存的であるように、レセプターによって媒介される。ｐ９７のトランスサイトーシスは、血液脳関門（ＢＢＢ）の構造的完全性を損なうことなく生じ、そしてｐ９７は、実質的に分解されない。

（Ｂ．定義）
「メラノトランスフェリン」は、本明細書中で使用する場合、時折、「ＭＴｆ」または「ｐ９７」と称される。本開示において使用される場合、ＭＴｆは、膜結合ｐ９７（すなわち、ＧＰＩアンカーまたはいくつかの他のアンカーに結合したｐ９７）、分泌型ｐ９７、可溶性ｐ９７、切断型ｐ９７、ｐ９７の等価物であるｐ９７のアナログ（ペプチド配列レベルで４０％より高い相同性を有し、ｐ９７の対立遺伝子改変体を含む）、ヒト、マウス、ニワトリおよび／またはウサギのｐ９７、ならびにこれらの誘導体、部分またはフラグメントを含む。ｐ９７は、酸性塩もしくは塩基性塩の形態であり得るか、またはその中性形態であり得る。さらに、個々のアミノ酸残基は、例えば、酸化または還元によって改変され得る。さらに、種々の置換、欠失または付加が、アミノ酸配列または核酸配列に対して作製され得、その正味の影響は、ｐ９７の所望の生物学的活性を保持または改善することである。コードの縮重性に起因して、例えば、同じアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列においてかなりのバリエーションが存在し得る。

「ｐ９７フラグメント」は、本明細書中で使用する場合、ｐ９７の十分な部分を含んで、ＭＴｆ−Ｒへ結合することおよび血液脳関門を横切って輸送されることを可能にする、ｐ９７の任意の部分またはその生物学的に等価なアナログ；あるいはｐ９７の所望の生物学的活性を別の方法で保持または改善する生物学的に等価なアナログを含む。

「メラノトランスフェリン結合体化治療剤」あるいは「ＭＴｆ−ＴＡ」は、本明細書中で使用する場合、別の化合物に共有結合で結合体化したｐ９７またはｐ９７フラグメントを含む組成物をいう。この結合体化は、それが化学的結合体化である限り、直接的であっても間接的（すなわち、伸びたリンカーを介する）であってもよい。リンカーは、米国仮特許出願、表題「Ｔｈｅ Ｕｓｅ ｏｆ Ｉｓｏｃｙａｎａｔｅ Ｌｉｎｋｅｒｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｈｙｄｒｏｌｙｚａｂｌｅ Ａｃｔｉｖｅ Ａｇｅｎｔ Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ」（発明者Ｑｉｎｇｑｉ Ｃｈｅｎ、Ｄａｍｉａｎ ＳｏｗａおよびＲｅｉｎｈａｒｄ Ｇａｂａｔｈｕｌｅｒ、２００２年７月１２日出願、そして本出願と同じ譲受人に譲渡された）（この内容は、その全体が本明細書中で参考として援用される）において教示されるようであり得る。

本発明のＭＴｆ−ＴＡの一般的構成は、以下のとおりである：

メラノトランスフェリン結合体化治療剤（ＭＴｆ−ＴＡ）は、多数の疾患（神経学的疾患および状態（例えば、アルツハイマー病、パーキンソン病、精神分裂病、てんかんなど）；神経学的癌（例えば、原発性脳腫瘍（グリオーム、髄膜腫、神経鞘腫、下垂体腺腫、髄芽細胞腫、頭蓋咽頭腫を含む）、血管腫、類表皮、肉腫および他の腫瘍供給源由来の頭蓋内転移）；ならびに神経学的感染または炎症状態が挙げられるが、これらに限定されない）を処置するために使用され得る。さらに、ＭＴｆ−ＴＡは、非ＣＮＳ（すなわち、非ＢＢＢ区画化（ｄｅｌｉｍｉｔ））疾患（例えば、非ＣＮＳ器官の癌、疾患および状態を処置）するために使用され得る。ＭＴｆ−ＴＡおよびその用途の詳細な記載は、米国特許出願番合６０／２２６，２４２および同６０／２２６，２５４に示され、これらの教示は、本明細書中で参考として援用される。

「調節」は、本明細書中で使用する場合、増大または減少によって変更する（例えば、アンタゴニストまたはアゴニストとして作用する）能力をいう。

「メラノトランスフェリンレセプター」（「ＭＴｆ−Ｒ」）は、本明細書中で使用する場合、ＭＴｆに特異的または優先的に結合する、任意の生物学的系をいう。この用語は、Ｌｆおよび／またはβ−アミロイドタンパク質に競合的に結合するレセプターを含むが、トランスフェリンレセプター（Ｔｆ−Ｒ）（これは、ＯＭＩＭ ＃ ＊１９００１０にて記載され、そしてＴＦＲ、ＴＲＦＲおよびＣＤ７１としても公知である）のような、Ｔｆに特異的なレセプターを排除することが意図される。Ｌｆに特異的または優先的に結合することが公知のレセプターは、本明細書中にて、「ラクトフェリンレセプター」（Ｌｆ−Ｒ）と称される。公知のＬｆ−Ｒとしては、ＬＤＬ関連レセプターが挙げられるがこれに限定されない。公知のＬＤＬ関連レセプターは、リポタンパク質レセプター関連タンパク質／α２−マクログロブリンレセプター（「ＬＲＰ１」）である。用語、ＭＴｆ−Ｒは、ＭＴｆおよびＬｆの両方に特異的に結合するが、Ｔｆには特異的に結合しない、内皮細胞上に見出される他のレセプターを特に含む。好ましい実施形態において、ＭＴｆ−Ｒは、ＬＲＰ１である。より好ましい実施形態において、ＭＴｆ−Ｒは、ＬＲＰ１Ｂである。

低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）レセプターファミリーのメンバーとしては、ＬＤＬ−Ｒ（１３２ｋＤａ）；ＬＲＰ／ＬＲＰ１およびＬＲＰ１Ｂ（６００ｋＤａ）；メガリン（Ｍｅｇａｌｉｎ）（（ＬＲＰ２）、６００ｋＤａ）；ＶＬＤＬ−Ｒ（１３０ｋＤａ）；ＥＲ−２（ＬＲＰ−８、１３０ｋＤａ）；モザイクＬＤＬ−Ｒ（ＬＲ１１、２５０ＫＤａ）；ならびに他のメンバー（例えば、ＬＲＰ３、ＬＲＰ６およびＬＲＰ−７）が挙げられる。ＬＤＬ−Ｒファミリーの特徴的な特徴としては、以下が挙げられる：細胞表面発現；細胞外リガンド結合ドメインリピート（ＤｘＳＤＥ）；リガンド結合のためのＣａ＋＋要件；ＲＡＰおよびＡｐｏＥの認識；ＥＧＦ前駆体相同性ドメインリピート（ＹＷＴＤ）；１回膜貫通領域；細胞質ドメインにおける内在化シグナル（ＦＤＮＰＸＹ）；およびレセプター媒介性の、種々のリガンドのエンドサイトーシス。

ＬＲＰは、低密度リポタンパク質関連タンパク質およびこのレセプターファミリーのメンバーをいう。４５２５アミノ酸（６００ｋＤａ）の大きいタンパク質であり、これは、フューリン（ｆｕｒｉｎ）によって切断されて、非共有結合したままの５１５ｋＤａ（α）および８５ｋＤａ（β）の２つのサブユニットを生じる。ＬＲＰは、肝臓、腎臓、ニューロン、ＣＮＳ、ＢＢＢ、ＳＭＣおよび種々の培養細胞において主に発現される。

（ＬＲＰリガンド）多数の分子が、ＬＲＰに結合することが公知である。これらの分子としては、例えば、ラクトフェリン、ＲＡＰ、リポタンパク質リパーゼ、ＡｐｏＥ、第ＶＩＩＩ因子、β−アミロイド前駆体、α２−マクログロブリン、トロンボスポンジン２ ＭＭＰ−２、ＭＰＰ−９−ＴＩＭＰ−１；ｕＰＡ：ＰＡＩ−Ｉ：ｕＰＡＲ；およびｔＰＡ：ＰＡＩ−ｌ：ｕＰＡＲが挙げられる（図２３もまた、参照のこと）。

ＬＲＰ１Ｂは、最近発見された、低密度リポタンパク質レセプターファミリーのメンバーである。６００ｋＤａの多機能性細胞表面レセプター。Ｌｉｕら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６（３１）：２８８８９−２８８９６（２００１）を参照のこと。Ｌｉｕら、Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ６９，２７１−２７４（２０００）；およびＬｉｕら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６０，１９６１−１９６７（２０００）もまた参照のこと。このレセプターは、メガリンよりもＬＲＰとより密接に関連し、そしてｃＤＮＡレベルで５９％の相同性、そして予測されたアミノ酸レベルで５２％の相同性を共有する。ＬＲＰ１Ｂ遺伝子は、脳、甲状腺および唾液腺において発現される。ＬＲＰ１Ｂの公知のリガンドとしては、ＲＡＰ、ｔＰＡ、ＰＡＩ−１が挙げられる。

マウスＬＲＰ１Ｂは、ＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＸＭ １４３０２３ ＸＭ １３０２４１によってアクセス可能である。ヒトＬＲＰ１Ｂは、ＧｅｎＢａｎｋ登録番号 ＸＭ ０１５４５２によってアクセス可能である。

「リポタンパク質レセプター関連タンパク質／α２−マクログロブリンレセプター」（「ＬＲＰ１」は、本明細書中で使用する場合、多機能性レセプターをいう。それは、システインリッチ型の集合（ｃｌｕｓｔｅｒｉｎｇ）であると考えられる。ＬＤＬレセプターにおいて見出されるものと類似する結合反復は、以前は関連しないと考えられていた種々のリガンド：活性化型α−２−マクログロブリン、アポリポタンパク質Ｅ、リポタンパク質リパーゼ、プラスミノゲンアクチベーターおよびそれらのインヒビターとの複合体（ＰＡおよびＰＡ／ＰＡＩ−１）、リポタンパク質（ａ）、シュードモナス外毒素Ａ、ヒトライノウイルス、Ｌｆ、ならびにいわゆるレセプター結合タンパク質（ＲＡＰ）、に結合する能力についての分子的基礎である。Ｍｅｉｌｉｎｇｅｒら，ＦＥＢＳ Ｌｅｔ．，３６０：７０−７４（１９９５）を参照のこと。

ＬＲＰＩは、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．：Ｘ１３９１６およびＳｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ Ｐｒｉｍａｒｙ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．：Ｑ０７９５４を通じて入手可能である。

ＬＰＲ１遺伝子／タンパク質の別名としては、低密度リポタンパク質レセプター関連タンパク質１［前駆体］、ＬＲＰ、α−２−マクログロブリンレセプター、Ａ２ＭＲ、アポリポタンパク質Ｅレセプター、ＡＰＯＥＲ、ＣＤ９１、ＬＲＰ１、またはＡ２ＭＲが挙げられる。

本発明のスクリーニングアッセイおよび他の実施形態はまた、ヒトＬＲＰ１（ｈＬＲＰ１）またはＬＲＰ１Ｂのホモログを使用し得る。このようなホモログは、他の生物（特に、真核生物（そして好ましくは、哺乳動物））から獲得され得る。

ヒトＬＲＰの好ましいホモログとしては、以下のＬＲＰタンパク質が挙げられるがこれらに限定されない。

当業者は、本発明において使用するのに適切なＬＲＰ１、またはより詳細にはＬＲＰ１Ｂの他のホモログを容易に同定し得る。

「高度グリケーション末端産物（Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｇｌｙｃａｔｉｏｎ Ｅｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔ）に対するレセプター」（「ＲＡＧＥ」）は、本明細書中で使用する場合、細胞表面分子の免疫グロブリンスーパーファミリーのマルチリガンドメンバーをいう。ＲＡＧＥは、糖尿病および腎不全のような障害において蓄積する糖酸化（ｇｌｙｃｏｘｉｄａｔｉｏｎ）により形成される付加物である、高度グリケーション末端産物（「ＡＧＥ」）に結合するその能力に基づいて最初に同定および特徴付けられた。その後の研究により、ＲＡＧＥは、アミロイド−β−ペプチド（アルツハイマー病の神経炎症局面の主要成分であるβ−アミロイド前駆体タンパク質（β−ＡＰＰ）の切断産物）の細胞表面レセプターとして機能することが実証されている。他のリガンドとしては、アンフォテリンおよびｓ１００／カルグラニュリン様分子が挙げられる（Ｈｏｆｍａｎｎら，Ｃｅｌｌ，９７（７）：８８９−９０１（１９９９）を参照のこと）。ＲＡＧＥは、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．：Ｍ９１２１１およびＳｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ Ｐｒｉｍａｒｙ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．：Ｑ１５１０９を通じて容易に入手可能である。

「機能的効果を決定する」は、ＭＴｆ−Ｒの影響下で間接的または直接的なパラメータ（例えば、機能的効果、物理的効果、および化学的効果）を調節（例えば、増加または減少）する化合物についてのアッセイを意味する。本明細書中で詳細に記載される機能的効果に加えて、他の機能的効果が、当業者に公知の任意の手段（例えば、分光光度的特徴（例えば、蛍光、吸光度、反射係数）の変化、流体力学的特性（例えば、形状）、クロマトグラフィー特性、または溶解特性、ＭＴｆ−Ｒの遺伝子発現の変化など）により測定され得ることが、当業者に容易に明らかである。

ＭＲｆ−Ｒの「インヒビター」、「アクチベーター」、および「モジュレーター」は、ＭＴＦ−Ｒのインビトロアッセイおよび／またはインビボアッセイを用いて同定される阻害性化合物、活性化化合物、または調節化合物をいうように、交換可能に使用される。

潜在的アクチベーター、インヒビター、またはモジュレーターで処理されたＭＴｆ−Ｒを含むサンプルまたはアッセイは、阻害の程度を試験するため、インヒビター、アクチベーター、またはモジュレーターを含まないコントロールサンプルと比較される。コントロールサンプル（インヒビターで処理されない）は、相対的ＭＲｆ−Ｒ活性値１００％を割り当てられる。ＭＴｆ−Ｒの阻害は、コントロールに対するＭＲｆ−Ｒ活性値が、約８０％、好ましくは５０％、より好ましくは２５〜０％の場合に達成される。ＭＴｆ−Ｒの活性化は、コントロール（アクチベーターで処理されない）に対するＭＲｆ−Ｒ活性値が、１１０％、より好ましくは１５０％、より好ましくは２００〜５００％（すなわち、コントロールに対して２〜５倍高い）、より好ましくは１０００〜３０００％高い場合に達成される。

（Ｃ．メラノトランスフェリンレセプター（ＭＴｆ−Ｒ）のモジュレーターについてのスクリーニングアッセイ）
本発明は、ＭＴｆ−Ｒを用いるスクリーニングアッセイを提供する。このアッセイにおいて、化合物は、ＭＴｆ−Ｒの測定可能な活性に影響を与えるそれらの能力について試験される。ＭＴｆ−Ｒは、全細胞形式、細胞抽出物形式、準精製形式、精製形式、またはその活性の測定を可能にする任意の他の形式であり得る。活性は、ＭＴｆ−Ｒの発現、機能、または分解における任意の活性であり得、例えば、このような活性の量または時期が挙げられる。例えば、このような活性としては、ＭＴｆ−Ｒ遺伝子配列またはｍＲＮＡ転写物の転写、転写プロセシング、翻訳、または転写安定性が挙げられる。例えば、このような活性としては、新たなＭＴｆ−Ｒの合成、ＭＴｆ−Ｒの細胞下局在化、およびＭＴｆ−Ｒの生物学的活性の活性化が挙げられる。例えば、このような活性としては、物質に結合する、コンホメーションを採択する、反応を触媒する、既知のリガンドに結合するなどのＭＴｆ−Ｒの能力が挙げられる。例えば、このような活性としては、ＭＴｆ−Ｒの量または安定性、プロセシング、およびＭＴｆ−Ｒの除去または分解などが挙げられる。好ましい実施形態において、スクリーニングにおいて使用するためのＭＴｆ−Ｒレセプターは、ＬＰＲ１またはＬＰＲ１Ｂである。

好ましいスクリーニングアッセイにおいて、化合物は、以下のようなＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターを同定するために試験される：ＭＴｆとのＭＴｆ−Ｒ相互作用、Ｌｆもしくは他の推定リガンドとのＭＴｆ−Ｒ相互作用、または鉄／他の金属の取り込み；血液−脳関門（「ＢＢＢ」）を通じた（すなわち、ＢＢＢモデルにおける）ＭＴｆの輸送；ＢＢＢモデルを通じたＬｆ、他のリガンド、もしくは金属の輸送；ならびに／あるいは、ＭＴｆ−Ｒ遺伝子またはｍＲＮＡの転写、翻訳、または発現レベルの割合または量の測定。

本発明は、種々の異なるスクリーニング形式を企図する。いくつかの設計は、低スループットをみなされ、そして１つのみまたはいくつかの化合物が、連続してまたは平行して試験される。高スループットスクリーニングアッセイは、１０，０００または１００，０００の化合物を数週または数月でスクリーニングするのに適している。「インシリコ」スクリーニング形式は、コンピュータにより補助される合理的な設計技術を用いて、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性の潜在的モジュレーターを同定する。

本発明の試験化合物は、任意の供給源から獲得され得るが、好ましい市販の実施形態は、１００，０００の化合物（これらの多くは、潜在的な治療因子である）の市販の化合物ライブラリを用いる。これらの化合物は、連続してまたは平行して試験され、ＭＴｆ−Ｒ活性の調節活性が同定される。好ましい試験化合物は、インヒビターの化学的構造の推定などのためにＭＴｆ−Ｒの既知のリガンドおよび推定リガンドを試験することによって同定され得る。他のコンピュータにより補助される設計技術は、不適切な候補（例えば、毒性の副作用を生じると考えられる候補）を排除するために使用され得る。当業者は、本発明の試験化合物および本発明の潜在的治療因子をさらに選択するために使用され得るコンビナトリアル技術および医化学技術に熟知している。

スクリーニングアッセイの目的は、動物またはヒトの臨床試験に適切であり、そして治療因子として適切であるＭＴｆ−Ｒ活性のモジュレーターを同定することである。このように、このスクリーニングアッセイは、ＭＴｆ−Ｒの刺激因子（ｓｔｉｍｕｌａｎｔ）、アゴニスト、またはアンタゴニストを同定する。ＭＴｆ−Ｒの刺激因子、アゴニスト、またはアンタゴニストを同定する方法は、ＭＴｆがＭＴｆ−Ｒに結合し得る条件下で、刺激性、アゴニスト性、またはアンタゴニスト性であると疑われる物質を、ＭＴｆおよびＭＴｆ−Ｒと接触する工程；ＭＴｆ−Ｒに結合したＭＴｆの量を測定する工程；ならびに、ＭＴｆ−Ｒに結合したＭＴｆの量と、コントロールについて決定された量と比較することによって、この物質の効果を決定する工程、を包含し得る。この方法において使用され得るＭＴｆとしては、ＧＰＩのＭＴｆ切断型、可溶性ＭＴｆ、切断型ＭＴｆ、またはそれらの誘導体（好ましくは、組み換えＭＴｆ）が挙げられる。本発明のこの方法において、ＭＴＦ−Ｒに結合したＭＴｆの量は、ＭＴＦ−Ｒに結合したＭＴｆの量、非結合ＭＴｆの量、または非結合ＭＴｆ−Ｒの量を測定することによって決定され得る。ＭＴｆ−Ｒに結合したＭＴｆは、従来の単離技術（例えば、塩析（ｓａｌｔｉｎｇ ｏｕｔ）、クロマトグラフィー、電気泳動、ゲル濾過、分画、吸着、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、凝集、またはそれらの組み合わせ）によって単離され得る。ＭＴｆ−Ｒに結合したＭＴｆ、もしくは非結合ＭＴｆ、または非結合ＭＴｆ−Ｒの測定を容易にするために、例えば、ＭＴｆまたはＭＴｆ−Ｒに対する抗体が使用され得る。

１つの実施形態において、本発明はまた、ＭＴｆにより媒介される鉄の取り込みの刺激因子、アゴニスト、またはアンタゴニストを同定するための方法に関する。この方法は、ＭＴｆ−Ｒをその表面に発現する細胞およびＭＴｆ−Ｒの刺激因子、アゴニスト、またはアンタゴニストと疑われる試験物質（例えば、化合物）を、鉄に結合したＭＴｆ（ホロＭＴｆ）の存在下およびトランスフェリンの非存在下でインキュベートする工程、その細胞への鉄の取り込みの量を測定する工程、ならびに試験物質の非存在下でのコントロールインキュベーションからの細胞における鉄の取り込みの量と、その細胞における鉄の取り込みの量を比較することによって、ＭＴｆ−Ｒにより媒介される鉄の取り込みの刺激因子、アゴニスト、またはアンタゴニストを同定する工程、を包含する。鉄の取り込みは、細胞膜を通る、細胞中への鉄のインターナリゼーションをいう。

（Ｄ．ＭＴｆ−Ｒ活性を調節することによる、メラノトランスフェリン結合治療因子（ＭＴｆ−ＴＡ）の取り込みの調節）
別の実施形態において、本発明は、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性を調節する化合物を使用して、メラノトランスフェリン結合治療因子（ＭＴｆ−ＴＡ）の細胞への取り込み量を調節する方法に関する。特に、本発明は、脳へのＭＴｆ−ＴＡの取り込みを増大する方法に関する。この方法は、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターを、ＭＴｆ−ＴＡと同時にかまたは連続してかのいずれかで投与する工程を包含する。あるいは、本発明は、脳へのＭＴｆ−ＴＡの取り込みを低減する方法に関する。この方法は、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターを、ＭＴｆ−ＴＡと同時にかまたは連続してかのいずれかで投与する工程を包含する。好ましい実施形態において、これらの方法は、本明細書上記のスクリーニングアッセイを用いて最初に同定されるＭＴｆ−Ｒのモジュレーターを用いる。好ましい実施形態において、スクリーニングにおいて使用するためのＭＴｆ−Ｒレセプターは、ＬＲＰ１またはＬＲＰ１Ｂである。

当業者は、血液−脳関門を通じたＭＴｆ−ＴＡの取り込みおよび送達を増大することが、ＭＴｆ−ＴＡが神経学的状態を処置するために使用される状況、および増大した量の送達が治療的利益を提供する状況のような状況（しかし、これらに限定されない）において有用であり、所望されることを理解する。当業者は、血液−脳関門を通じたＭＴｆ−ＴＡの取り込みおよび送達を低減することが、種々の理由（ＭＴｆ−ＴＡがその心臓保護効果のために使用されるかまたは他の（非ＣＮＳ）器官において使用される場合、および脳取り込みの副作用が回避されるべきである場合が挙げられるがこれらに限定されない）で有用であり、所望されることを理解する。

ＭＴｆ−Ｒ活性のモジュレーターは、以下の実施例Ｉに示されるトランスウェル装置の改良版を用いて容易に同定され得る。改良形態において、化合物は、トランスウェル装置のセルのルミナル表面に、ＭＴｆ−ＴＡと組み合わせて添加される。次いで、この化合物は、ＢＢＣＥＣを通じた非ルミナル側へのＭＴｆ−ＴＡの輸送を増大または低減するか否かを決定するために、スコア付けされる。化合物のライブラリは、薬理学的に優れたモジュレーターを同定するために、容易にスクリーニングまたは試験され得る。

（Ｅ．Ｌｆ−Ｒモジュレーターにより処置可能な疾患）
特定のＭＴｆ−ＲがＬｆ−Ｒであるという驚くべき発見の結果として、それが、Ｌｆ−Ｒの生物学的活性のモジュレーターがＭＴｆの生物学的活性と関連していることが公知の疾患プロセスに対する影響を有し得ることがここで発見された。このようにして、例えば、本発明のスクリーニングアッセイによって同定されるＬｆ−Ｒのモジュレーターについての以下の用途が、ここで同定された。

１）迅速に増殖する細胞（例えば、悪性細胞）は、鉄に対する増大した要求を有し、そして鉄を獲得するための有効な機構を有さなければならない。鉄を獲得する悪性細胞の能力を制限することは、腫瘍細胞を死滅させる方法またはそれらの制御されない細胞増殖を調節する方法を提供する。

２）これらの発見により、Ｌｆ−Ｒのモジュレーターが、細胞における鉄の取り込みを調節するために使用され得るという発見が導かれる。細胞における鉄の取り込みは、細胞表面上のＬｆ−Ｒの量を変更することにより、またはＭＴｆへのＬｆ−Ｒの結合を阻害することにより調節され得る。従って、Ｌｆ−Ｒの刺激因子、アゴニスト、またはアンタゴニストは、鉄代謝における障害が存在する状態または疾患の処置において有用であり得る。例えば、このような物質は、ヘモクロマトーシス、神経変性疾患、虚血性組織損傷（虚血性発作または外傷を含む）、心臓疾患、および腫瘍（例えば、皮膚癌）のような状態の処置において有用である。

３）ＭＴｆは、他の金属（例えば、亜鉛およびアルミニウム）の結合および取り込みにおいて役割を果たす（Ｓｅｋｙｅｒｅ，Ｅ．およびＲｉｃｈａｒｄｓｏｎ，Ｄ．Ｒ．，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔｅｒｓ，４８３：１１−１６（２０００））。従って、Ｌｆ−Ｒの活性または発現の調節は、アルツハイマー病またはメタロプロテイン（例えば、亜鉛依存性メタロプロテイン）の調節（ｍｏｄｕｌａｔｅ）または調節（ｒｅｇｕｌａｔｅ）において役割を果たす。

４）本発明の化合物および方法を用いて（すなわち、ＭＴｆにより媒介される鉄の取り込みの刺激因子、アゴニスト、およびアンタゴニストを用いて）処置され得る鉄代謝における障害に関与する状態は、例えば、食餌からの過剰な鉄の吸収、細胞への鉄の取り込みにおける欠陥、細胞への過剰な鉄の取り込みに関与する状態、または輸血による定期的な処置を必要とする状態である（例えば、赤血球異形成貧血、特にサラセミア傷害）。このような状態の例としては、ヘモクロマトーシス、神経変性疾患（例えば、アルツハイマー病、ハンティングトン病、およびパーキンソン病）、虚血性組織損傷、心臓疾患および腫瘍、炎症、ならびに感染が挙げられるがこれらに限定されない（Ｐｉｐｐａｒｄ，「Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｕｓｅ ｏｆ Ｉｒｏｎ Ｃｈｅｌａｔｉｏｎ」，Ｉｒｏｎ ｉｎ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ，Ｃａｎｃｅｒ ａｎｄ Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ（Ｍ．ｄｅ ＳｏｕｓａおよびＪ．Ｈ．Ｂｒｏｃｋ（編），１９８９，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ）を参照のこと（この文献は、本明細書中で参考として援用される））。

５）Ｌｆ−Ｒの活性または発現のモジュレーターを用いて処置され得る疾患としては、アルツハイマー病、パーキンソン病、精神分裂病、てんかんおよびその他、神経癌（例えば、原発性脳腫瘍（神経膠腫、髄膜腫、神経鞘腫、下垂体腺腫、髄芽腫、頭蓋咽頭腫、血管腫、類表皮腫、肉腫、および他の腫瘍源からの頭蓋内転移が挙げられる）および神経学的感染または炎症性状態）のような神経学的疾患および状態が挙げられる。Ｌｆ−Ｒの活性または発現のモジュレーター（ｏｄｕｌａｔｏｒ）は、非ＣＮＳ（すなわち、非ＢＢＢ限定）疾患（例えば、非ＣＮＳ器官の癌、疾患、および状態）を処置するために使用され得る。

一旦潜在的治療因子が試験化合物の中から同定されると、当業者は、受容可能なヒトまたは動物の治療因子を開発するのに必要とされる基本的な薬理学的工程を熟知している。例えば、治療用量は、動物研究およびヒト臨床試験から獲得され得る。適切な薬理学的キャリアおよび賦形剤も同様であり得る。

（Ｆ．ＭＴｆ−Ｒタンパク質／ポリペプチドの治療的および診断的用途）
本発明の別の実施形態において、ＭＴｆ−Ｒタンパク質またはそのフラグメントを、それを必要とする動物に投与し、治療的または予防的結果をもたらすための方法を提供する。インビボでのＭＴｆ−Ｒタンパク質またはそのフラグメントは、ＭＴｆに結合し、そしてＭＴｆの循環濃度を効果的に減少させる。この処置は、ＭＴｆの増大したレベルが疾患の進行（特に、アルツハイマー病）に関係することが既知の疾患において有用である（Ｋｅｎｎａｒｄら，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１２３０−１２３５（１９９６）；米国特許第５，９８１，１９４号を参照のこと）。診断ツールとしての、検出可能な標識で標識されたＭＴｆ−Ｒタンパク質またはそのフラグメントの投与は、被験体におけるＭＴｆの位置または量を同定する。このようなツールは、より高いレベルのＭＴｆを発現することが既知の腫瘍細胞を発見するために特に有用である。おそらく、強いβ放射粒子（例えば、特定のヨウ素またはイットリウムアイソトープ）によるＭＴｆ−Ｒの標識は、ＭＴｆ−Ｒが結合する腫瘍細胞を死滅させるのを補助する。

他の治療標的は、ＨＩＶ感染（ＴＡＴレセプターとして）、シナプス可塑性に対するＮＭＤＡレセプターの活性化、アルツハイマー病（ＬＲＰは、ＡＰｏＥのレセプターなので）、α２−マクログロブリン、ＡＰＰに（これらは全て、この疾患に関連する）；ならびに脂質分解リソソーム酵素（ＳＡＰ依存性）の調節に関連する。

（Ｇ．ＭＴｆ−Ｒ抗体）
ＭＴｆ−Ｒの１つ以上のエピトープ、もしくはＭＴｆ−Ｒの保存された改変体のエピトープ、またはＭＴｆ−Ｒのペプチドフラグメントを特異的に認識する抗体もまた、本発明に含まれる。このような抗体としては、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）、ヒト化抗体またはキメラ抗体、単鎖抗体、Ｆａｂ抗体、Ｆ（ａｂ’）２抗体、Ｆａｂ発現ライブラリによって生成されるフラグメント、抗イディオタイプ（抗Ｉｄ）抗体、および上記いずれかのエピトープ結合フラグメントが挙げられるがこれらに限定されない。

本発明の抗体は、例えば、ＭＴｆ−Ｒ遺伝子産物の発現および／または活性に対する試験化合物の効果の評価のために、上記のような化合物スクリーニングアッセイと組み合わせて使用され得る。さらに、このような抗体は、例えば、正常なＭＴｆ−Ｒ発現および／または操作されたＭＴｆ−Ｒ発現のトランスフェクションの成功を評価するために、遺伝子治療技術と組み合わせて使用され得る。このような抗体は、ＭＴｆ−Ｒの生物学的活性のアンタゴニストとして使用され得、そしてさらに、異常なＭＴｆ−Ｒ活性の阻害のための方法として使用され得る。従って、このような抗体は、本発明に従って、治療因子として使用され得る。

本発明のＭＴｆ−Ｒ抗体はまた、動物中でのＭＴｆ−Ｒの位置、量、挙動などを同定するための診断技術において使用され得る。

抗体の生成について、種々の宿主動物が、ＭＴｆ−Ｒ、ＭＴｆ−Ｒタンパク質もしくはペプチド（例えば、このレセプターの機能的ドメインに対応するタンパク質もしくはペプチド）、短縮型ＭＴｆ−Ｒポリペプチド（１つ以上のドメインが欠失されたＭＴｆ−Ｒ）、ＭＴｆ−Ｒの機能的等価物、またはＭＴｆ−Ｒの変異体の注入によって免疫され得る。このような宿主動物としては、いくつかを列挙すると、ウサギ、マウス、およびラットが挙げられるがこれらに限定されない。種々のアジュバントが、宿主種に依存して、免疫学的応答を増大するために使用され得る。アジュバントとしては、Ｆｒｅｕｎｄアジュバント（完全および不完全）、ミネラルゲル（例えば、水酸化アルミニウム）、表面活性物質（例えば、リゾレシチン）、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、油エマルジョン、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、および潜在的に有用なヒトアジュバント（例えば、ＢＣＧ（カルメット−ゲラン杆菌）およびＣｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐａｒｖｕｍ）が挙げられるがこれらに限定されない。ポリクローナル抗体は、免疫動物の血清由来の抗体分子の異種性集団である。

（Ｈ．ＭＴｆ−Ｒアンチセンスオリゴヌクレオチドおよびリボザイム）
本発明はまた、ＭＴｆ−Ｒ（例えば、ＬＲＰ１またはＬＲＰ１Ｂ）ｍＲＮＡまたは前駆体ＲＮＡへのハイブリダイゼーションに特異的な配列（すなわち、ＭＴｆ−ＲまたはｍＲＮＡもしくは前駆体ＲＮＡに特異的または選択的にハイブリダイズする配列）を有するアンチセンスオリゴヌクレオチド配列の使用を包含する。当業者は、上記の既知のＭＴｆ−Ｒ ｍＲＮＡ配列に基づき、適切なアンチセンスオリゴヌクレオチド配列を容易に同定し得る。当業者は、それらの臨床的有用性を改善するオリゴヌクレオチドの化学特性に対する改変（例えば、ホスホロチオエート改変）を熟知している。ＭＴｆ−Ｒアンチセンスオリゴヌクレオチドは、ＭＴｆ−Ｒ発現を調節するため、特に、そのような発現をダウンレギュレートするために使用され得る化合物の例である。当業者はまた、同様の目的を達成するリボザイムを設計し得る。このような核酸を送達する方法は、以下に記載される。

（Ｉ．ＭＴｆ−Ｒ遺伝子治療）
本発明の特定の実施形態は、遺伝子治療法においてＭＴｆ−Ｒ遺伝子の使用を用いる。このような介入の目的は、ＭＴｆ−Ｒ遺伝子の機能的なコピーを、それらを必要とする細胞に送達し、その細胞中でのＭＴｆ−Ｒタンパク質の転写ならびにその後の翻訳および発現を増大することである。当業者は、ＭＴｆ−Ｒ遺伝子を含む遺伝子治療ベクターを送達するウイルス法、非ウイルス（すなわち、脂質に基づく）法、裸のＤＮＡ法、およびポリマー法を熟知している。このような方法は、当業者に公知であり、当業者に使用されているインビボまたはエキソビボ遺伝子治療技術を用い得る。

（Ｊ．神経学的疾患の診断）
本発明はまた、神経学的疾患の診断に関する。この診断は、神経組織または非ＣＮＳ標的器官に関連する任意の組織（例えば、肺、肝臓、腎臓、脾臓など）において、ＢＢＢで発現されるＭＴｆ−Ｒの量または活性を検出する工程を包含する。この診断方法は、ＭＴｆ−Ｒに特異的な因子（すなわち、ＭＴｆ−Ｒ抗体、リガンド（例えば、ＭＴｆもしくはＬｆ）、またはＭＴｆ−Ｒに特異的に結合する別のリガンド）、および検出可能な結合体または標識（すなわち、テクネチウムまたはヨウ素の放射性同位体）を含む診断因子を使用する。当業者は、ＭＴｆ−Ｒの量または位置の決定が関連する疾患または状態を同定し得る。ＭＴｆ−Ｒが、本発明の結果として直接的に関連する疾患または状態（例えば、アルツハイマー病）が、最も好ましい。

（Ｋ．ＬＤＬ−Ｒレセプターファミリーメンバーへの異なるリガンドの結合）
多数のリガンドが、ＬＤＬ−Ｒレセプターファミリーのメンバーに結合することが見出されている。これらのリガンドおよびそれらのレセプターは、表１〜３に示される。

（表１．リポタンパク質およびアポリポタンパク質）

（表２．プロテアーゼインヒビターおよびプロテアーゼ／インヒビター複合体）

（表３．他のリガンド）

（Ｌ．活性薬剤）
本発明に従う活性薬剤としては、任意の生物学的プロセスに影響する薬剤が挙げられる。用語「薬物」または「治療剤」とは、治療的に有効な量で投与される場合、薬理学的活性を有するか、または健康のためになる活性薬剤をいう。薬物または治療剤の例としては、疾患もしくは状態の、予防、診断、軽減、処置、または治癒に用いられる物質が挙げられる。

ｐ９７タンパク質もしくはフラグメントまたはＬＲＰ１モジュレーターもしくはＬＲＰリガンドに結合体化した活性薬剤は、生きている宿主における生物学的プロセスを調節し得る、任意の分子、ならびに任意の結合タンパク質またはそのフラグメントであり得る。一般的に、この活性薬剤は、任意のサイズのものであり得るが、好ましくは、目的の標的に結合し得る有機低分子である。低分子の場合、結合体の薬物部分は、少なくとも約５０Ｄ、通常、少なくとも約１００Ｄの分子量を有し、ここで、分子量は、５００Ｄ以上と同じ程度高いものであり得るが、通常、約２０００Ｄを超えない。

薬物部分は、結合体が、本発明の方法の実施の間に投与される、宿主中の標的と相互作用し得る。この標的は、多数の異なる型の天然に存在する構造であり得、ここで、目的の標的としては、細胞内標的および細胞外標的の両方が挙げられ、ここで、このような標的は、タンパク質、リン脂質、核酸などであり得、ここで、タンパク質は、特に興味深いものである。目的の特定のタンパク質分解酵素標的としては、限定せずに、酵素（例えば、キナーゼ、ホスファターゼ、レダクターゼ、シクロオキシゲナーゼ、プロテアーゼなど）、タンパク質−タンパク質相互作用に関与するドメイン（例えば、ＳＨ２ドメイン、ＳＨ３ドメイン、ＰＴＢドメインおよびＰＤＺドメイン）を含む標的、構造タンパク質（例えば、アクチン、チューブリンなど）、膜レセプター、免疫グロブリン（例えば、ＩｇＥ）、細胞接着レセプター（例えば、インテグリンなど）、イオンチャンネル、膜透過ポンプ、転写因子、シグナル伝達タンパク質などが挙げられる。

活性薬剤または薬物は、イソシアネート試薬と反応するためのヒドロキシ基またはアミノ基を有するか、または活性薬剤は、イソシアネート試薬と反応するためのヒドロキシ基またはアミノ基を導入するために、化学的に改変される。

いくつかの実施形態では、活性薬剤または薬物はまた、好ましくは、活性薬剤の所望の生物学的活性の損失なしに、改変され得、そして／または共有連結に関与し得る領域を含む。薬物部分は、しばしば、上記の官能基の１つ以上と置換された、環状炭素構造もしくは複素環構造、および／または芳香族構造もしくは多芳香族構造を含む。また、薬物部分として興味深いものは、ペプチド、サッカリド、脂肪酸、ステロイド、プリン、ピリミジン、それらの誘導体、構造的アナログまたは組み合わせを含む、生体分子、タンパク質、酵素、多糖類、およびポリ核酸において見出される構造である。

この結合体は、同じ生体高分子に連結した１つ以上の活性薬剤を含み得る。例えば、結合体化反応は、１〜５個、約５個、約１〜１０個、約５〜１０個、約１０〜２０個、約２０〜３０個、または３０個以上の活性薬剤の分子を、生体高分子に結合体化し得る。これらの処方物は、混合物として用いられ得るか、またはこれらは、特定の（ｍｏｌ：ｍｏｌ）処方物へと精製され得る。当業者は、どの形式およびどのｍｏｌ：ｍｏｌ比が好ましいかを決定し得る。さらに、１を超える型の活性薬剤は、標的部位またはコンパートメントへの１を超える型の薬剤の送達が所望される場合、生体高分子に連結され得る。複数の活性薬剤種が、生体高分子がｐ９７関連タンパク質である場合、アドリアマイシン−シスプラチン結合体化組成物のような、同じ生体高分子に結合され得る。従って、この結合体は、ある範囲のｍｏｌ：ｍｏｌ比から構成され得、そして１を超える型の活性薬剤を組み込み得る。これらはまた、精製された混合物へと分離され得るか、またはこれらは、凝集物に用いられ得る。活性薬剤としては、本明細書中で参考として援用される米国特許第６，３７２，７１２号で同定されたものが挙げられる。

薬物部分が送達され得る本発明の特定の薬物としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：以下のような、向精神薬：１）中枢神経系抑制剤、例えば、全身麻酔（バルビレート、ベンゾジアゼピン、ステロイド、シクロヘキサノン誘導体、および種々の薬剤）、鎮静薬−催眠薬（ベンゾジアゼピン、バルビツレート、ピペリジンジオンおよびトリオン（ｔｒｉｏｎｅ）、キンナゾリン誘導体、カルバメート、アルデヒドおよび誘導体、アミド、非環式ウレイド、ベンゾアゼピン、および関連薬物、フェノチアジンなど）、中枢随意筋緊張改変薬物（ｃｅｎｔｒａｌ ｖｏｌｕｎｔａｒｙ ｍａｓｃｌｅ ｔｏｎｅ ｍｏｄｉｆｙｉｎｇ ｄｒｕｇ）（ヒダントイン、バルビツレート、オキサゾリジンジオン、スクシンイミド、アシルウレイド、グルタルイミド、ベンゾジアゼピン、２級アルコールおよび３級アルコール、ジベンズアゼピン誘導体、バルプロ酸および誘導体、ＧＡＢＡアナログなどのような、痙攣薬）、鎮痛剤（モルフィンおよび誘導体、オリパビン誘導体、モルフィナン誘導体、フェニルピペリジン、２，６−メタン−３−ベンズアゾカイン誘導体、ジフェニルプロピルアミンおよびアイソスター、サリチレート、ｐ−アミノフェノール誘導体、５−ピラゾロン誘導体、アリール酢酸誘導体、フェナメートおよびアイソスターなど）、ならびに抗催吐剤（抗コリン作用剤、抗ヒスタミン剤、抗ドパミン作用剤など）、（２）中枢神経刺激剤、例えば、中枢神経興奮薬（呼吸刺激剤、痙攣刺激剤、精神運動刺激剤）、麻酔薬アンタゴニスト（モルフィン誘導体、オリパビン（ｏｒｉｐａｖｉｎｅ）誘導体、２，６−メタン−３−ベンゾオサシン誘導体、モルフィン誘導体）向知性剤（ｎｏｏｔｒｏｐｉｃｓ）、（３）精神薬理学剤、例えば、抗不安鎮静剤（ベンゾジアゼピン、プロパンジオールカルバメート）抗精神病薬（フェノチアジン誘導体、チオキサンチン誘導体、他の三環系化合物、ブチロフェノン誘導体およびアイソスター、ジフェニルブチラミン誘導体、置換ベンズアミド、アリールピペラジン誘導体、インドール誘導体など）、抗欝剤（三環系化合物、ＭＡＯインヒビターなど）、（４）気道薬物、例えば、中枢鎮咳薬（ｃｅｎｔｒａｌ ａｎｔｉｔｕｓｓｉｖｅｓ）（オピウムアルカロイドおよびそれらの誘導体）；薬力学剤、例えば、（１）末梢神経薬物、例えば、局部麻酔薬（エステル誘導体、アミド誘導体）、（２）シナプスまたは神経効果器接合部位にて作用する薬物、例えば、コリン作用性剤、コリン作用性遮断剤、神経筋遮断剤、アドレナリン作用性剤、抗アドレナリン作用性剤、（３）平滑筋活性剤、例えば、鎮痙薬（抗コリン作用製剤、向筋肉性鎮痙薬）、血管拡張薬、平滑筋刺激剤、（４）ヒスタミンおよび抗ヒスタミン、例えば、ヒスタミンおよびその誘導体（ベタゾール）、抗ヒスタミン（Ｈ_１−アンタゴニスト、Ｈ_２−アンタゴニスト）、ヒスタミン代謝薬物、（５）心血管薬物、例えば、強心剤（植物抽出物、ブテノリド（ｂｕｔｅｎｏｌｉｄｅ）、ペンタジエノリド、エリトロフレイン由来のアルカロイド、イオノフォア、アドレノセプター刺激剤など）、抗不整脈薬物、抗高血圧剤、抗脂肪血症剤（クロフィブリン酸誘導体、ニコチン酸誘導体、ホルモンおよびアナログ、抗生物質、サリチル酸および誘導体）、抗静脈瘤薬物、止血薬、（６）血液および造血系薬物、例えば、抗貧血薬物、血液凝固薬物（止血剤、抗凝固剤、抗血栓剤、血栓溶解剤、血液タンパク質およびこれらの画分）、（７）胃腸管薬物、例えば、消化剤（健胃薬、胆汁分泌促進薬）、抗潰瘍薬物、下痢止め剤、（８）局所作用薬物；化学治療剤、例えば、（１）抗感染剤、例えば、外部寄生生物撲滅薬（塩素化された炭化水素、ピレトリン、含硫化合物）、駆虫剤、抗原虫薬、抗マラリア薬、抗アメーバ剤、抗リーシュマニア薬物、抗トリコモナス薬剤、抗トリパノソーマ剤、スルホンアミド、抗マイコバクテリア薬物、抗ウイルス化学治療剤など、ならびに（２）細胞増殖抑制剤、すなわち、抗新生物剤または細胞傷害性薬物、例えば、アルキル化剤（例えば、塩酸メクロレタミン（ナイトロジェンマスタード、マスタージェン（ｍｕｓｔａｒｇｅｎ）、ＨＮ２））、シクロホスファミド（サイトバン（Ｃｙｔｏｖａｎ）、エンドキサナ（Ｅｎｄｏｘａｎａ））、イホスファミド（ＩＦＥＸ）、クロラムブシル（ロイケラン（Ｌｅｕｋｅｒａｎ））、メルファラン（フェニルアラニンマスタード、Ｌ−サルコリシン、アルケラン、Ｌ−ＰＡＭ）、ブスルファン（ミレラン）、チオテパ（トリエチレンチオホスホルアミド）、カルムスチン（ＢｉＣＮＵ、ＢＣＮＵ）、ロムスチン（ＣｅｅＮＵ、ＣＣＮＵ）、ストレプトゾシン（ザノザール（ｚａｎｏｓａｒ））など；植物アルカロイド、例えば、ビンクリスチン（オンコビン（Ｏｎｃｏｖｉｎ）、ビンブラスチン（ベルバン（Ｖｅｌｂａｎ）、ベルベ（Ｖｅｌｂｅ））、パクリタキセル（タキソール）など；抗代謝剤、例えば、メトトレキセート（ＭＴＸ）、メルカプトプリン（プリネトール、６−ＭＰ）、チオグアニン（６−ＴＧ）、フルオロウラシル（５−ＦＵ）、シタラビン（サイトサール−Ｕ、Ａｒａ−Ｃ）、アザシチジン（マイロサール（Ｍｙｌｏｓａｒ）、５−ＡＺＡ）など；抗生物質、例えば、ダクチノマシン（アクチノマイシンＤ、コスメゲン）、ドキソルビシン（アドリアマイシン）、ダウノルビシン（ダウノマイシン、セルビジン）、イダルビシン（イダマイシン）、ブレオマイシン（ブレノキサン（ｂｌｅｎｏｘａｎｅ））、ピカマイシン（ミトラマイシン、ミトラシン）、ミトマイシン（ムタマイシン）など、ならびに他の抗細胞増殖剤、例えば、ヒドロキシウレア（ヒドレア（ｈｙｄｒｅａ））、プロカルバジン（ムタラン（ｍｕｔａｌａｎ））、ダカルバジン（ＤＴＩＣ−Ｄｏｍｅ）、シスプラチン（プラチノール）カルボプラチン（パラプラチン）、アスパラギナーゼ（エルスパー（Ｅｌｓｐａｒ））エトポシド（ＶｅＰｅｓｉｄ，ＶＰ−１６−２１３）、アムサクリン（ＡＭＳＡ、ｍ−ＡＭＳＡ）、ミトタン（リソドレン（ｌｙｓｏｄｒｅｎ））、ミトキサントロン（ノバトロン）など；
抗菌剤、例えば：アミノグリコシド、例えば、アミカシン、アプラマイシン、アルベカシン、バンベルマイシン（ｂａｍｂｅｒｍｙｃｉｎ）、ブチロシン、ジベカシン、ジヒドロストレプトマイシン、フォーチミシン、ゲンタマイシン、イセパマイシン、カナマイシン、ミクロノマイシン、ネオマイシン、ネチルマイシン、パロモマイシン、リボスタマイシン、シソマイシン、スペクチノマイシン、ストレプトマイシン、トブラマイシン、トロスペクトマイシン（ｔｒｏｓｐｅｃｔｏｍｙｃｉｎ）；アンフェニコール、例えば、アジダンフェニコール（ａｚｉｄａｍｆｅｎｉｃｏｌ）、クロラムフェニコール、フロルフェニコール、およびテイマフェニコール（ｔｈｅｉｍａｐｈｅｎｉｃｏｌ）；アンサマイシン、例えば、リファミド（ｒｉｆａｍｉｄｅ）、リファンピン、リファマイシン、リファペンチン、リファキシミン；β−ラクタム、例えば、カルバセフェム、カルバペネム、セファロスポリン、セファマイシン（ｃｅｈｐａｍｙｃｉｎ）、モノバクタム、オキサフェム、ペニシリン；リンコサミド（ｌｉｎｃｏｓａｍｉｄｅ）、例えば、クリナマイシン（ｃｌｉｎａｍｙｃｉｎ）、リンコマイシン；マクロライド、例えば、クラリスロマイシン、ダースロマイシン（ｄｉｒｔｈｒｏｍｙｃｉｎ）、エリスロマイシンなど；ポリペプチド、例えば、アンホマイシン、バシトラシン、カプレオマイシンなど；テトラサイクリン、例えば、アピサイクリン（ａｐｉｃｙｃｌｉｎｅ）、クロロテトラサイクリン、クロモサイクリン（ｃｌｏｍｏｃｙｃｌｉｎ）など；合成抗菌剤、例えば、２，４−ジアミノピリミジン、ニトロフラン、キノロンおよびそのアナログ、スルホンアミド、スルホン；
抗真菌剤、例えば：ポリエン、例えば、アンホテリシンＢ、カンジシジン、ダーモスタチン（ｄｅｒｍｏｓｔａｔｉｎ）、フィリピン、フンギクロミン（ｆｕｎｇｉｃｈｒｏｍｉｎ）、ハチマイシン（ｈａｃｈｉｍｙｃｉｎ）、ハミシン（ｈａｍｙｃｉｎ）、ルセンソマイシン、メパルトリシン（ｍｅｐａｒｔｒｉｃｉｎ）、ナタマイシン、ナイスタチン、ペシロシン（ｐｅｃｉｌｏｃｉｎ）、ペリマイシン（ｐｅｒｉｍｙｃｉｎ）；合成抗真菌剤、例えば、アリルアミン、例えば、ブテナフィン、ナフチフィン、テルビナフィン；イミダゾール、例えば、ビフォナゾール、ブトコナゾール（ｂｕｔｏｃｏｎａｚｏｌｅ）、クロルダントイン、クロルミダゾール（ｃｈｌｏｒｍｉｄａｚｏｌｅ）など、チオカルバメート、例えば、トルシクラート、トリアゾール、例えば、フルコナゾール、イトラコナゾール、ターコナゾール；
駆虫薬、例えば：アレコリン、アスピジン、アスピジノール、ジクロロフェン、エンベリン、コシン（ｋｏｓｉｎ）、ナフタレン、ニクロサミド、ペレチエリン、キナクリン、アラントラクトン（ａｌａｎｔｏｌａｃｔｏｎｅ）、アモカルジン（ａｍｏｃａｒｚｉｎｅ）、アモスカネート（ａｍｏｓｃａｎａｔｅ）、アスカリドール、ベフェニウム、ビトスカネート（ｂｉｔｏｓｃａｎａｔｅ）、カーボンテトラクロリド、カルバクロール、シクロベンダゾール、ジエチルカルバマジンなど；
抗マラリア薬、例えば：アセダプソン、アモジアキン、アルテエーテル、アルテメテル（ａｒｔｅｍｅｔｈｅｒ）、アルテミシニン、アルテスネート（ａｒｔｅｓｕｎａｔｅ）、アトバクォン（ａｔｏｖａｑｕｏｎｅ）、ベベリン、ベルベリン、チラタ、クロルグアニド、クロロキン、クロルプロガウニル（ｃｈｌｏｒｐｒｏｇａｕｎｉｌ）、キナ、シンコニジン、シンコニン、シクログアニル、ゲンチオピクリン、ハロファントリン（ｈａｌｏｆａｎｔｒｉｎｅ）、ヒドロキシクロロキン、塩酸メフロキン、３−メチルアルサセチン、パマキン、プラスモシド（ｐｌａｓｍｏｃｉｄ）、プリマキン、ピリメタミン、キナクリン、キニジン、キニーネ、キノーシド、キノリン、第二砒酸ナトリウム；
抗原虫薬、例えば：アクラニル（ａｃｒａｎｉｌ）、チニダゾール、イプロニダゾール、エチルスチバミン、ペンタミジン、アセタルゾン、アミニトロゾール（ａｍｉｎｉｔｒｏｚｏｌｅ）、アニソマイシン、ニフラテル、チニダゾール、ベンジダゾール（ｂｅｎｚｉｄａｚｏｌｅ）、スラミンなど。

薬物部分が送達され得る目的の薬物化合物はまた、Ｇｏｏｄｍａｎ ＆ Ｇｉｌｍａｎ’ｓ，Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ Ｂａｓｉｓ ｏｆ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ（第９版）（Ｇｏｏｄｍａｎら編）（ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ）（１９９６）；および１９９９ Ｐｈｙｓｉｃｉａｎ’ｓ Ｄｅｓｋ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ（１９９８）に列挙される。

目的の特定の化合物としてはまた、以下が挙げられるが、これらに限定されない：
以下の米国特許に開示されるような、抗新生物剤：

以下の米国特許に開示されるような、精神薬理学／向精神剤：

以下の米国特許に開示されるような、心血管剤：

以下の米国特許に開示されるような、抗菌剤：

以下の米国特許に開示されるような、抗炎症剤：

以下の米国特許に開示されるような、免疫抑制剤：

以下の米国特許に開示されるような、鎮痛剤：

以下の米国特許に開示されるような、コリン作用性剤：

以下の米国特許に開示されるような、アドレナリン作用性剤：

以下の米国特許に開示されるような、抗ヒスタミン剤：

以下の米国特許に開示されるような、ステロイド剤：

上記の全ての開示は、本明細書中で参考として援用される。

結合体の薬物部分は、化合物の全体、または目的の標的に対するアフィニティーおよび特異性を保持する一方で、プレゼンタータンパク質リガンドまたはリンカーに共有結合するための連結部位を有する、その結合フラグメントもしくは部分であり得る。このような薬物の結合体は、薬物自体と同じ障害、疾患、および徴候に用いられ得る。

（Ｍ．Ｐ９７およびモジュレーター）
１つの実施形態では、活性薬剤は、ｐ９７、またはＬＲＰレセプターファミリー（例えば、ＬＲＰ１、ＬＲＰ１Ｂ）のモジュレーターもしくはリガンドに結合体化されるか、またはｐ９７もしくはモジュレーター（例えば、ｐ９７に対する抗体）に特異的に結合し得る抗体である。さらなる実施形態では、この薬剤は、増殖因子、リンホカイン、酵素、または薬物のような、治療的活性を有する物質であり得る。本発明はまた、このような結合体を投与する工程を包含する、活性薬剤を血液脳関門を横切って送達する方法に関する。

１つの実施形態では、ｐ９７タンパク質は可溶性である。米国特許第５，９８１，１９４号に教示されるような、ｐ９７タンパク質が特に好ましい。ｐ９７は、ヒトｐ９７タンパク質またはそのフラグメントであり得；ｐ９７は、マウスのような哺乳動物由来であり得る。マウスｐ９７は、ＷＯ０１／５９５４９ Ａ２に開示される（これは、その全体が本明細書中で参考として援用される）。

本発明の組成物に用いる場合、「ｐ９７」は、以下を含む：膜結合ｐ９７（すなわち、ＧＰＩまたは他の脂質に連結したｐ９７）、可溶性ｐ９７、切断されたｐ９７、ｐ９７のアナログ（これらは、ｐ９７の等価物（ペプチド配列レベルで４０％、６０％、８０％、または９０％を超える相同性を有し、ｐ９７の対立遺伝子改変体を含む）である）、ヒトｐ９７、マウスｐ９７、ニワトリｐ９７、および／またはウサギｐ９７、ならびにそれらの誘導体、部分、またはフラグメント。ｐ９７は、酸性塩もしくは塩基性塩の形態であり得るか、または中性形態であり得る。さらに、個々のアミノ酸残基は、例えば、酸化または還元によって修飾され得る。種々の置換、欠失、または付加が、アミノ酸配列またはＤＮＡ核酸配列に対してなされ得、これらの正味の効果は、ｐ９７の所望の生物学的活性を保持または改善することである。コードの縮重に起因して、例えば、同じアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列におけるかなりの数のバリエーションが存在し得る。本明細書中で用いられる場合、ｐ９７はまた、ｐ９７の任意の部分またはその生物学的に等価なアナログを含む、ｐ９７のフラグメントを含み、これらは、ｐ９７の所望の生物学的活性を保持または改善することを可能にするのに、十分な部分のｐ９７および対応するネイティブｐ９７アミノ酸配列に対する相同性を有する。他の局面では、本発明は、そのレセプター結合特性または経細胞輸送特性に実質的に影響しないアミノ酸配列におけるマイナーな置換のみを有するｐ９７結合体に引き付けられる。

本発明のｐ９７化学治療剤結合体に使用するための好ましい化学治療剤としては、遊離形態か、または遊離形態であまり有用ではない場合、ｐ９７に連結したときに有用であるかのいずれかで、脳の中または周りにおける脳腫瘍または他の新形成を処置するために有用であり得る全ての薬物が挙げられる。このような化学治療剤としては、アドリアマイシン（ドキソルビシンとしてもまた公知）、シスプラチン、パクリタキセル、そのアナログ、およびエキソビボおよびインビボで腫瘍に対する活性を実証する他の化学治療剤が挙げられる。このような化学治療剤としてはまた、以下が挙げられる：アルキル化剤、代謝拮抗物質、天然物（例えば、ビンカアルカロイド、エピドフィロトキシン（ｅｐｉｄｏｐｈｙｌｌｏｔｏｘｉｎ）、抗生物質、酵素および生物学的応答変更因子）、トポイソメラーゼインヒビター、微小管インヒビター、紡錘体毒、ホルモン、およびアンタゴニスト、および種々雑多なものからなる薬剤（例えば、白金配位錯体、アントラセンジオン、置換尿素など）。当業者は、他の化学治療剤を知っている。

ｐ９７−化学治療剤は、ｐ９７に連結した１つ以上の化合物部分を含み得る。例えば、結合体化反応は、アドリアマイシンの１〜１０以上の分子を単一のｐ９７分子に結合体化し得る。金またはヨウ素のいくつかの原子は、単一のｐ９７ポリペプチドに結合体化され得る。これらの処方物は、混合物として用いられ得るか、またはこれらは、特定のｐ９７：化合物（ｍｏｌ：ｍｏｌ）処方物へと精製され得る。当業者は、どのフォーマットおよびどのｍｏｌ：ｍｏｌ比が好ましいかを決定し得る。さらに、化合物の混合物（例えば、実施例に示すｐ９７−アドリアマイシン−シスプラチン組成物）が、ｐ９７に連結され得る。これらのｐ９７−化学治療剤は、ある範囲のｍｏｌ：ｍｏｌ比からなり得る。これらはまた、精製された混合物に分離され得るか、または凝集物に用いられ得る。

本発明の組成物はまた、血液目関門または血液胎盤関門を横切って薬剤を送達するために用いられ得る。

本発明の組成物はまた、活性薬剤に結合体化したＬＲＰ１レセプターまたはＬＲＰ１Ｂレセプターの経細胞輸送リガンドまたはエンドサイトーシスリガンドを含み得る。

（Ｎ．標識）
いくつかの実施形態では、本発明に従う、結合体またはモジュレーターまたはＬＲＰリガンドは、その検出を容易にするために標識される。「標識」または「検出可能な部分」とは、分光学的手段、光化学的手段、生化学的手段、免疫化学的手段、化学的手段、または他の物理的手段によって検出可能な組成物である。例えば、本発明における使用に適切な標識としては、例えば、以下が挙げられる：放射性標識（例えば、^３２Ｐ）、発蛍光団（例えば、フルオレセイン）、電子密度試薬、酵素（例えば、ＥＬＩＳＡにおいて通常用いられるような）、ビオチン、ジゴキシゲニン、またはハプテン、および、例えば、放射性標識をハプテンもしくはペプチドへと組み込むことにより検出可能にされ得るか、またはハプテンもしくはペプチドと特異的に反応する抗体を検出するために用いられ得る、タンパク質。

上記のように、用いられるスクリーニングアッセイに依存して、薬物、リンカー、または結合体のｐ９７もしくはモジュレーターもしくはリガンドの部分が標識され得る。用いられる特定の標識または検出可能な基は、それが結合体の生物学的活性を顕著に妨害しない限り、本発明の重要な局面ではない。この検出可能な基は、検出可能な物理的特性または化学的特性を有する任意の材料であり得る。従って、標識は、分光学的手段、光化学的手段、生化学的手段、免疫化学的手段、電気的手段、光学的手段、または化学的手段により検出可能である任意の組成物である。

本発明における使用に適切な標識の例としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：蛍光色素（例えば、フルオレセインイソチオシアネート、テキサスレッド、ローダミンなど）、放射性標識（例えば、^３Ｈ、^１２５Ｉ、^３５Ｓ、^１４Ｃ、または^３２Ｐ）、酵素（例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、およびＥＬＩＳＡに一般的に用いられる他のもの）、および比色標識（例えば、金コロイドまたは着色ガラスまたはプラスチックビーズ（例えば、ポリスチレン、ポリプロピレン、ラテックスなど））。

標識は、当該分野で周知の方法に従うアッセイの所望の成分に直接的または間接的に連結され得る。好ましくは、１つの実施形態における標識は、本発明に従う活性薬剤を結合体化するためのイソシアネート試薬を用いて、生体ポリマーに共有結合される。本発明の１つの局面では、本発明の二官能性イソシアネート試薬を用いて、標識を生体ポリマーに結合体化させて、それに結合した活性薬剤を有さない、標識生体ポリマー結合体を形成し得る。この標識生体ポリマー結合体は、本発明に従う標識結合体の合成のための中間体として用いられ得るか、または生体結合体を検出するために用いられ得る。上に示されるように、広範な種々の標識が使用され得、この標識の選択は、必要とされる感受性、アッセイの所望の成分との結合体化の容易さ、安定性要件、利用可能な装置、および廃棄規定に依存する。非放射性標識は、頻繁に、間接的手段により結合される。一般的に、リガンド分子（例えば、ビオチン）は、分子に共有結合される。次いで、リガンドは、別の分子（例えば、ストレプトアビジン）分子に結合し、これは、固有に検出可能であるか、または単一の系（例えば、検出可能な酵素、蛍光化合物、または化学発光化合物）に共有結合するかのいずれかである。

結合体はまた、例えば、酵素または発蛍光団との結合体化により、シグナル生成化合物に直接結合体化され得る。標識として使用するために適切な酵素としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：加水分解酵素、特に、ホスファターゼ、エステラーゼ、およびグリコシダーゼ、またはオキシドターゼ、特にペルオキシダーゼ。標識としての使用に適切な、蛍光化合物（すなわち、発蛍光団）としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：フルオレセインおよびその誘導体、ローダミンおよびその誘導体、ダンシル、ウンベリフェロンなど。適切な発蛍光団のさらなる例としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：エオシン、ＴＲＩＴＣ−アミン、キニーネ、フルオレセインＷ、アクリジンイエロー、リサミン（ｌｉｓｓａｍｉｎｅ）ローダミン、Ｂスルホニルクロライドエリスロセイン（Ｂ ｓｕｌｆｏｎｙｌ ｃｈｌｏｒｉｄｅ ｅｒｙｔｈｒｏｓｃｅｉｎ）、ルテニウム（トリス、ビピリジニウム）、テキサスレッド、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、フラビンアデニンジヌクレオチドなど。標識としての使用に適切な化学発光化合物としては、ルシフェリンおよび２，３−ジヒドロフタラジンジオン（例えば、ルミノール）が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の方法において用いられ得る、種々の標識またはシグナル生成系の総説としては、米国特許第４，３９１，９０４号を参照のこと。

標識を検出する手段は、当業者に周知である。従って、例えば、標識が放射性標識である場合、この標識は、検出のための手段としては、シンチレーションカウンターまたはオートラジオグラフィーの場合のような写真フィルムが挙げられる。標識が蛍光標識である場合、適切な波長の光を用いて蛍光色素を励起し、そして生じた蛍光を検出することにより、検出され得る。蛍光は、電子検出器（例えば、電荷結合デバイス（ＣＣＤ）または光電子増倍管など）の使用により、視覚的に検出され得る。同様に、酵素的標識は、適切な基質を酵素に提供し、そして得られた反応生成物を検出することにより検出され得る。比色標識または化学発光標識は、この標識に関係する色を観察することによって、簡単に検出され得る。本発明の方法における使用に適切な他の標識系および検出系は、当業者に容易に理解される。このような標識したモジュレーターおよびリガンドは、疾患または健康状態の診断に用いられ得る。

（Ｏ．使用方法、薬学的組成物、およびこれらの投与）
用語「薬学的に受容可能なキャリア」は、標準的な薬学的キャリア、緩衝液、および賦形剤（リン酸緩衝化生理食塩水溶液、水、およびエマルジョン（例えば、油／水エマルジョンまたは水／油エマルジョン））のいずれか、ならびに種々の型の湿潤剤および／またはアジュバントを含む。適切な薬学的キャリアおよびそれらの処方物は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，第１９版、１９９５）に記載される。好ましい薬学的キャリアは、活性薬剤の投与の意図される様式に依存する。投与の代表的な様式は、以下に記載される。

用語「有効量」は、被験体の健康状態、病理、疾患、または診断目的に対する所望の結果を生じるのに十分な投薬量を意味する。所望の結果は、投薬のレシピエントにおける主観的改善または客観的改善を含み得る。

「予防的処置」は、疾患の徴候を示さないか、または疾患の初期の徴候のみを示す被験体に投与される処置であり、ここで、処置は、病状を発症する危険性を低下させる目的で投与される。本発明の結合体化合物は、予防的処置として与えら得る。

「治療的処置」は、病状の徴候を示す被験体に投与される処置であり、ここで、処置は、これらの病理学的徴候を減少するかまたは排除する目的で投与される。本発明の結合体化合物、モジュレーター、およびリガンドは、予防的処置として、または診断のために与えられ得る。

薬学的組成物の場合のように、用語「組成物」は、活性成分、およびキャリアを構成する不活性成分を含む生成物、ならびに任意の２つ以上の成分の組み合わせ、複合体形成または凝集から、または１つ以上の成分の分離から、または１つ以上の成分の他の型の反応または相互作用から、直接的または間接的に生じる、任意の生成物を包含することが意図される。従って、本発明の薬学的組成物は、本発明の結合体化合物と薬学的に受容可能なキャリアとを混合することにより作製される任意の組成物を包含する。用語「薬学的組成物」は、動物またはヒトを含む、被験体における薬学的使用に適切な組成物を示す。薬学的組成物は、一般的に、有効量の結合体、モジュレーター、またはＬＲＰリガンドもしくはＬＲＰ１Ｂリガンド、および薬学的に受容可能なキャリアを含む。

結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドは、種々の経路により投与され得る。経口調製物について、結合体は、単独または以下と組合わせて用いられ得る：錠剤、粉末、顆粒またはカプセルを作製するための適切な添加物、例えば、ラクトース、マンニトール、トウモロコシデンプンまたはジャガイモデンプンのような、従来の添加物；結晶性セルロース、セルロース誘導体、アラビアゴム、トウモロコシデンプンまたはゼラチンのような、結合剤；トウモロコシデンプン、ジャガイモデンプンまたはカルボキシメチルセルロースナトリウムのような、崩壊剤；滑石またはステアリン酸ナトリウムのような、潤滑剤；および所望される場合、希釈剤、緩衝剤、湿潤剤、保存剤および香味料。

結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドおよびＬＲＰ１Ｂリガンドは、これらを水性溶媒または非水性溶媒（例えば、植物油または他の類似の油、合成脂肪酸グリセリド、より高級な脂肪酸のエステルまたはプロピレングリコール）中に、所望される場合、従来の添加剤（例えば、可溶化剤、等張剤、懸濁剤、乳化剤、安定化剤、および保存剤）と共に、溶解、懸濁、または乳化することにより、注射のために調製物へと処方され得る。

結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドは、吸入によって投与されるエアロゾル処方物において利用され得る。本発明の化合物は、ジクロロジフルオロメタン、プロパン、窒素などのような、加圧した受容可能な推進剤へと処方され得る。

さらに、結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドが、種々の基剤（例えば、乳化基材または水溶性基材）と混合することによって、坐剤へと生成され得る。本発明の化合物は、坐剤を介して直腸投与され得る。坐剤は、ビヒクル（例えば、ココアバター、カーボワックス、およびポリエチレングリコール）を含み得、このビヒクルは、体温で融解するが、室温で固化している。

経口投与または直腸投与のための結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドの単位投与形態（例えば、シロップ、エリキシル、および懸濁物）が提供され得、各投与形態（例えば、茶サジ１杯、テーブルスプーン１杯、錠剤、または坐剤）は、活性因子を含む所定量の上記組成物を含む。同様に、注射または静脈内投与のための単位投与形態は、滅菌水、通常の生理食塩水または別の薬学的に受容可能なキャリア中の溶液として、組成物中に上記結合体を含み得る。用語「単位投与形態」とは、本明細書中で使用される場合、ヒト被験体および動物被験体のための単位投与量として適切な、物理的に別個の単位を指し、各単位は、薬学的に受容可能な希釈剤、キャリア、またはビヒクルと共同して、所望の効果を生じるに十分な量で計算された本発明の所定の量の化合物を含む。本発明の新規な単位投与形態についての詳細は、使用される特定の結合体および達成されるべき効果、ならびに宿主中における各化合物と関連する薬力学に依存する。

実際的な使用において、本発明の結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドが、従来の薬剤配合技術に従って薬学的キャリアとの密接な混合物の状態で、活性成分として組み合わされ得る。そのキャリアは、投与（例えば、経口投与または非経口投与（静脈内投与を含む））のために望ましい調製物の形態に依存して、広範な種類の形態を採り得る。経口投与形態のための組成物を調製する際、通常の薬学的媒体のいずれか（経口液体調製物（例えば、懸濁物、エリキシル、および溶液）の場合、例えば、水、グリコール、油、アルコール、矯味矯臭剤、防腐剤、着色剤など；または経口固体調製物の場合（例えば、散剤、硬カプセル剤、および軟カプセル剤、ならびに錠剤）は、キャリア（例えば、スターチ、糖、微結晶性セルロース、希釈剤、顆粒化剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤など））が、使用され得、固体経口調製物が、液体調製物よりも好ましい。

経皮投与経路に関して、薬物の経皮投与のための方法が、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，第１７版（Ｇｅｎｎａｒｏら編、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，１９８５）に開示される。皮膚パッチが、本発明の結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドの経皮送達のための好ましい手段である。パッチは、好ましくは、上記化合物の吸収を増加するために吸収増強剤（例えば、ＤＭＳＯ）を提供する。経皮薬物送達のための他の方法が、米国特許第５，９６２，０１２号、同第６，２６１，５９５号および同第６，２６１，５９５号に開示される。これらの米国特許の各々は、その全体が参考として援用される。

薬学的に受容可能な賦形剤（例えば、ビヒクル、アジュバント、キャリア、または希釈剤）が、市販されている。さらに、薬学的に受容可能な補助物質（例えば、ｐＨ調整剤および緩衝化剤、張度調整剤、安定化剤、湿潤剤など）が、市販されている。

当業者は、投与レベルは、特定の化合物、症状の重篤度、および副作用に対する被験体の感受性の関数として変化し得ることを、容易に理解する。所定の化合物のための好ましい投与量は、種々の手段により当業者によって容易に決定される。

これらの局面の各々において、上記組成物は、経口投与、直腸投与、局所投与、非経口投与（皮下投与、筋肉内投与、および静脈内投与を含む）、肺投与（経鼻吸入または経口腔吸入）または経鼻投与のために適切な組成物を包含するが、これらに限定されないが、所定の任意の場合において最も適切な経路は、標的とされる状態の性質および重篤度ならびに活性成分の性質に一部依存する。例示的投与経路は、経口経路および静脈内経路である。その組成物は、薬学の分野で周知の方法のうちのいずれかによって、単位投与形態で簡便に提示され得、そして調製され得る。

実際上の使用において、本発明に従う化合物（例えば、ＬＲＰリガンド結合体もしくはＬＲＰ１Ｂリガンド結合体、ＬＲＰモジュレーター結合体もしくはＬＲＰ１Ｂモジュレーター結合体、ＬＲＰリガンド−融合たんぱく質もしくはＬＲＰ１Ｂリガンド−融合タンパク質、ＬＲＰモジュレーターもしくはＬＲＰ１Ｂモジュレーター、およびＬＲＰリガンドもしくはＬＲＰ１Ｂリガンド）は、従来の薬剤配合技術に従って、密接な混合物の状態で活性成分として、薬学的キャリアと組み合わされ得る。そのキャリアは、投与（例えば、経口投与または非経口投与（静脈内投与を含む））のために望ましい調製物の形態に依存して、広範な種類の形態を採り得る。経口投与形態のための組成物を調製する際、通常の薬学的媒体のいずれか（経口液体調製物（例えば、懸濁物、エリキシル、および溶液）の場合、例えば、水、グリコール、油、アルコール、矯味矯臭剤、防腐剤、着色剤など；または経口固体調製物の場合（例えば、散剤、硬カプセル剤、および軟カプセル剤、ならびに錠剤）は、キャリア（例えば、スターチ、糖、微結晶性セルロース、希釈剤、顆粒化剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤など））が、使用され得、固体経口調製物が、液体調製物よりも好ましい。

投与の容易さが原因で、錠剤およびカプセルが、固体の薬学的キャリアが明らかにしようされる場合に、最も有利な経口投与形態を示す。望ましい場合、錠剤は、標準的水性技術または非水性技術によってコートされ得る。これらの組成物中の活性化合物のパーセンテージは、当然変化し得、そして簡便には、その単位の重量の約２％〜約６０％の間であり得る。

本発明の結合体、モジュレーター、およびリガンドは、動物において、特にヒトにおいて、治療介入のため、予防介入のため、および診断介入のために、有用である。本明細書中で記載されるように、この結合体は、使用される生体ポリマーに依存して、任意の標的器官、区画、または部位において、活性因子の優先的蓄積および／または放出を示す。

本発明の組成物は、ウイルスエンベロープまたは小胞中にカプセル化されて投与され得るか、ウイルスエンベロープまたは小胞に付着されて投与され得るか、または細胞中に組み込まれ得る。小胞は、通常は球形であり頻繁に脂質性である、ミセル粒子である。リポソームは、二重膜から生成された小胞である。適切な小胞としては、単層小胞および多層脂質小胞またはリポソームが挙げられるが、これらに限定されない。そのような小胞およびリポソームは、広範囲の脂質またはリン脂質化合物（例えば、ホスファチジルコリン、ホスファチジン酸、ホスファチジルセリン、ホスファチジルエタノールアミン、スフィンゴミエリン、糖脂質、ガングリオシドなど）から、標準的技術（例えば、米国特許第４，３９４，４４８号に記載される技術）を使用して、生成され得る。そのような小胞またはリポソームが、細胞内に化合物を投与するため、および標的器官に化合物を送達するために、使用され得る。目的のｐ９７組成物の徐放もまた、カプセル化を使用して達成され得る（例えば、米国特許第５，１８６，９４１号を参照のこと）。

この結合体、モジュレーター、およびＬＲＰリガンド組成物またはＬＲＰ１Ｂリガンド組成物を血流または血液−脳関門の少なくとも外側へと希釈する、任意の投与経路が使用され得る。好ましくは、その組成物は、末梢に投与され、最も好ましくは、静脈内投与されるか、または心臓カテーテルによって投与される。頸静脈内注射および頸動脈内注射もまた、有用である。組成物は、局所投与（例えば、腹腔内投与）され得る。１つの局面において、組成物は、適切な薬学的希釈剤またはキャリアとともに投与される。

投与される投与量は、個々の必要性または所望される効果、使用される活性因子、生体ポリマーおよび選択される投与経路に依存する。結合体の好ましい投与量は、約０．２ｐｍｏｌ／ｋｇ〜約２５ｎｍｏｌ／ｋｇの範囲であり、特に好ましい投与量は、２〜２５０ｐｍｏｌ／ｋｇの範囲にあるか；あるいは、その結合体の好ましい用量は、０．０２〜２０００ｍｇ／ｋｇの範囲内にあり得る。これらの投与量は、生体ポリマーと会合した活性因子または薬物部分の数によって影響される。あるいは、投与量は、投与される活性因子に基づいて計算され得る。

好ましい実施形態において、その結合体は、ｐ９７を含む。例えば、０．００５〜１００ｍｇ／ｋｇのアドリアマイシンを含むｐ９７−アドリアマイシンの投与もまた、インビボで有用である。特に好ましいのは、０．０５〜２０ｍｇ／ｋｇのアドリアマイシンを含むｐ９７−アドリアマイシンの投与である。当業者は、化合物の遊離形態のために使用される推奨投与量に基づいて、ｐ９７に結合した他の化合物についての適切な投与量を決定し得る。ｐ９７は、一般的には、同じ効果を得るために必要な薬物の量を減少する。

本発明のｐ９７結合体、モジュレーター、およびＬＲＰ１リガンドまたはＬＲＰ１Ｂリガンドは、動物（特にヒト）における、治療介入、予防介入、および診断介入のために有用である。本明細書中に記載されるように、ｐ９７化合物は、肺、肝臓、腎臓、および脾臓における優先的蓄積を示し、そしてｐ９７化合物は、心臓へのその化合物の送達を有意に減少する。診断用途のための好ましい医学的指標としては、例えば、目的の標的器官（例えば、肺、肝臓、腎臓、脾臓）に関連する任意の状態、または心臓毒性化合物の心臓毒性を減少することにより有益な心臓毒性化合物を必要とする任意の状態が挙げられる。

本方法は、種々の異なる疾患状態の処置における用途が見出される。特定の実施形態において、特に興味深いのは、所望の活性を有する活性因子または薬物が以前に同定されているがその活性因子または薬物がその標的部位にも、標的領域にも標的区画にも標的化されていない、疾患状態における本方法の使用である。そのような活性因子または薬物を用いて、本方法は、活性因子または薬物の治療効力および治療指数を増強するために使用され得る。

本結合体を用いることにより処置可能な特定の疾患状態は、その結合体中に存在し得る薬物部分の型により変動する。従って、疾患状態としては、細胞増殖疾患（例えば、新形成疾患、自己免疫疾患、心血管疾患、ホルモン異常疾患、変性疾患、加齢疾患、中枢神経系疾患（例えば、アルツハイマー病、癲癇、高脂血症）、精神医学的疾患および状態（例えば、精神分裂病、気分障害（例えば、抑鬱および不安））、感染性疾患などが挙げられる。

処置とは、結合体の投与に関連する被験体に対して有益な任意の結果を包含することになっており、そのような結果としては、疾患を得る可能性の減少、疾患進行の予防、疾患進行の遅延、疾患進行の停止、もしくは疾患進行の逆転、または宿主を冒す疾患状態に関連する症状の軽減が挙げられ、ここで、軽減または利益とは、処置される病理学的状態に関連するパラメーター（例えば、症状（例えば、炎症およびそれに関係する疼痛））の大きさの少なくとも減少を指すために広義の意味で使用される。このように、処置はまた、病理学的状態またはそれに関連する少なくとも症状が、完全に阻害される（例えば、発症を予防される）かまたは停止され（例えば、終結され）、その宿主が、その病理学的状態または少なくともその病理学的状態を特徴付ける症状にもはや罹患しないようになる、状態を包含する。

種々の宿主または被験体が、本方法に従って処置可能である。一般的に、このような宿主は、「哺乳類」または「哺乳動物」であり、これらの用語は、哺乳類綱（食肉目（例えば、イヌおよびネコ）、齧歯目（例えば、マウス、モルモットおよびラット）、および霊長類（例えば、ヒト、チンパンジー、およびサル）を含む）内にある生物を記載するために広範に使用される。多くの実施形態において、この宿主はヒトである。

（Ｐ．コンビナトリアル化学ライブラリー）
近年、新規な化合物リードの生成を補助するためのコンビナトリアル化学ライブラリーの使用に、注目が集中している。コンビナトリアル化学ライブラリーは、多数の化学的「構築ブロック（ｂｕｉｌｄｉｎｇ ｂｌｏｃｋ）」（例えば、試薬）を組み合わせることによって、化学合成または生物合成のいずれかによって生成される多岐の化合物の集合物である。例えば、線形コンビナトリアル化学ライブラリー（例えば、ポリペプチドライブラリー）が、アミノ酸と呼ばれる化学物質構築ブロックの組を、所定の化合物の長さ（すなわち、ポリペプチド化合物中のアミノ酸の数）のために可能なすべての様式で組み合わせることによって、形成される。数百万個の化合物が、化学物質構築ブロックのそのような組み合わせ混合を介して合成され得る。例えば、一解説者は、互換可能な１００個の化学物質構築ブロックの合成組み合わせ混合は、理論上１億個のテトラマー化合物または１００億個のペンタマー化合物の合成をもたらすと述べている（Ｇａｌｌｏｐら、Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３７（９）：１２３３（１９９４））。

コンビナトリアル化学ライブラリーの調製およびスクリーニングは、当業者に周知である。そのようなコンビナトリアル化学ライブラリーとしては、ベンゾヂアゼピン（米国特許第５，２８８，５１４号）、ダイバーソマー（ｄｉｖｅｒｓｏｍｅｒ）（例えば、ヒドラントイン、ベンゾジアゼピンおよびジペプチド（Ｈｏｂｂｓら、ＰＮＡＳ ＵＳＡ ９０：６９０９（１９９３）））、同様の小化合物ライブラリーの有機合成（Ｃｈｅｎら、Ｊ．Ａｍｅｒ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１６：２６６１（１９９４））、オリゴカルバメート（Ｃｈｏら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６１：１３０３（１９９３））および／またはペプチジルホスホネート（Ｃａｍｐｂｅｌｌら、Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ，５９：６５８（１９９４））および有機低分子ライブラリー（例えば、ベンゾジアゼピン（Ｂａｕｍ、Ｃ＆ＥＮ、Ｊａｎ １８、ｐ３３（１９９３））、チアゾリジノンおよびメタチアザノン（米国特許第５，５４９，９７４号、ピロリジン（米国特許第５，５２５，７３５号および同第５，５１９，１３４号）、ベンゾジアゼピン（米国特許第５，２８８，５１４号）などが挙げられるが、これらに限定されない。

コンビナトリアルライブラリーの調製のためのデバイスは、市販されている（例えば、３５７ ＭＰＳ、３９０ ＭＰＳ、Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｃｈｅｍ Ｔｅｃｈ，Ｌｏｕｉｓｖｉｌｌｅ ＫＹ、Ｓｙｍｐｈｏｎｙ，Ｒａｉｎｉｎ，Ｗｏｂｕｒｎ，ＭＡ，４３３Ａ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，ＣＡ，９０５０ Ｐｌｕｓ，Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡを参照のこと）。

多数の周知のロボットシステムがまた、溶液相化学のために開発されている。これらのシステムとしては、Ｔａｋｅｄａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ，ＬＴＤ（Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎ）により開発された自動合成装置、および化学者により実施される手動の合成操作を模倣するロボットアームを使用する多くのロボットシステム（Ｚｙｍａｔｅ ＩＩ，Ｚｙｍａｒｋ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｈｏｐｋｉｎｔｏｎ，Ｍａｓｓ．；Ｏｒｃａ，ＨｅｗｌｅｔｔＰａｃｋａｒｄ，Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ，ＣＡ）のような、自動ワークステーションが挙げられる。上記のデバイスのいずれかが、本発明とともに使用するために適切である。これらのデバイスが本明細書中に記載されるように作動し得るようにするこれらのデバイスに対する改変の性質および実施は、当業者に明らかである。さらに、多数のコンビナトリアルライブラリーは、それ自体が市販されている（例えば、ＣｏｍＧｅｎｅｘ，Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ，Ｎ．Ｊ．，Ａｓｉｎｅｘ，Ｍｏｓｃｏｗ，Ｒｕ，Ｔｒｉｐｏｓ，Ｉｎｃ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＣｈｅｍＳｔａｒ，Ｌｔｄ．，Ｍｏｓｃｏｗ，ＲＵ，３Ｄ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｅｘｔｏｎ、ＰＡ，Ｍａｒｔｅｋ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｃｏｌｕｍｂｉａ，ＭＤなどを参照のこと）。

好ましい実施形態において、そのコンビナトリアル化学は、ＬＲＰレセプターおよびＬＲＰ１Ｂレセプターの既知のネイティブヒトリガンドまたは内因性ヒトリガンドの改変体を、本発明に従って使用するための候補のリガンド、モジュレーター、および結合体として提供する。

（Ｑ．化学ライブラリーの高スループットアッセイ）
本明細書中に記載される化合物についてのアッセイは、高スループットスクリーニングされやすい。従って、好ましいアッセイは、試験化合物による転写の活性化（すなわち、ｍＲＮＡ産生の活性化）、試験化合物によるタンパク質発現の活性化、または試験化合物による遺伝子産物（例えば、発現されたタンパク質）への結合を検出する。ＢｉａＣｏｒｅ法は、結合活性について化合物を迅速にスクリーニングするためのそのような一手段である。

特定のタンパク質産物の存在、非存在もしくは定量についての高スループットアッセイ、または結合アッセイは、当業者に周知である。従って、例えば、米国特許第５，５５９，４１０号は、タンパク質についての高スループットスクリーニング法を開示し、米国特許第５，５７６，２２０号および同第５，５４１，０６１号は、リガンド／抗体結合についてスクリーニングするための高スループット法を開示する。

さらに、高スループットスクリーニングシステムは、市販されている（例えば、Ｚｙｍａｒｋ Ｃｏｒｐ．，Ｈｏｐｋｉｎｔｏｎ，ＭＡ；Ａｉｒ Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ，Ｍｅｎｔｏｒ，ＯＨ；Ｂｅｃｋｍａｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｉｎｃ．，Ｆｕｌｌｅｒｔｏｎ，ＣＡ；Ｐｒｅｃｉｓｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．，Ｎａｔｉｃｋ，ＭＡなどを参照のこと）。これらのシステムは、代表的には、すべてのサンプルおよび試薬のピペッティング、液体の分注、定刻インキュベーション、およびそのアッセイに適切な検出器におけるマイクロプレートの最終的読み取りを含む、手順全体を自動化する。これらの適合性システムは、高スループットおよび迅速な開始、ならびに高い程度の柔軟性および特別製作を提供する。そのようなシステムの製造は、種々の高スループットのための詳細なプロトコルを提供する。従って、例えば、Ｚｙｍａｒｋ Ｃｏｒｐ．は、遺伝子転写の調節、リガンド結合などを検出するためのスクリーニングシステムを記載する、技術的報告を提供する。

（Ｒ．構成および標識）
当業者は、タンパク質またはペプチドに活性化因子を結合体化する方法を知っている。活性因子および標識をタンパク質に結合体化する方法は、当該分野で周知である。例えば、米国特許第５，９８１，１９４号を参照のこと。多くの試薬および架橋剤が、活性因子と生体ポリマーとの生体結合体を調製するために使用され得る。例えば、Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ，ＧＴら、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ（１９９６）を参照のこと。

（キメラタンパク質の産生）
本発明のキメラタンパク質は、キメラタンパク質全体をコードする１つの核酸または１つより多くの核酸配列（各々が、そのキメラタンパク質のドメインをコードし、必要に応じてそれらのドメインを連結するように作用するアミノ酸をコードする）を発現する宿主細胞を使用して、産生され得る。そのキメラタンパク質はまた、化学合成により生成され得る。

（Ａ．宿主細胞）
キメラタンパク質を産生するために使用される宿主細胞は、細菌細胞、酵母細胞、昆虫細胞、非哺乳動物脊椎動物細胞、または哺乳動物細胞であり；この哺乳動物細胞としては、ハムスター細胞、サル細胞、チンパンジー細胞、イヌ細胞、ネコ細胞、ウシ細胞、ブタ細胞、マウス細胞、ラット細胞、ウサギ細胞、ヒツジ細胞およびヒト細胞が挙げられるが、これらに限定されない。その宿主細胞は、不死化細胞（細胞株）であっても、非不死化細胞（一次細胞または二次細胞）であってもよく、そして広範な種類の細胞型（例えば、線維芽細胞、ケラチノサイト、上皮細胞（例えば、哺乳動物上皮細胞、腸上皮細胞）、卵巣細胞（例えば、チャイニーズハムスター卵巣細胞すなわちＣＨＯ細胞）、内皮細胞、グリア細胞、神経細胞、血液の有構造エレメント（例えば、リンパ球、骨髄細胞）、筋細胞、肝細胞、およびこれらの体細胞型の前駆体が挙げられるが、これらに限定されない）のいずれかであり得る。

キメラタンパク質をコードするＤＮＡまたはＲＮＡを含みかつ発現する細胞は、本明細書中で、遺伝子改変細胞と呼ばれる。キメラタンパク質をコードするＤＮＡまたはＲＮＡを含みかつ発現する哺乳動物細胞は、遺伝子改変哺乳動物細胞と呼ばれる。細胞中にそのＤＮＡまたはＲＮＡを導入することは、公知のトランスフェクション法（例えば、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、微粒子ボンバードメント、リン酸カルシウム沈殿、改変型リン酸カルシウム沈殿、カチオン性脂質処理、フォトポレーション、融合方法論、レセプター媒介転移、またはポリブレン沈殿）による。あるいは、そのＤＮＡまたはＲＮＡは、ウイルスベクターによる感染によって導入され得る。キメラタンパク質をコードするＤＮＡまたはＲＮＡを発現する細胞（哺乳動物細胞を含む）を生成する方法は、Ｒｉｃｈａｒｄ Ｆ Ｓｅｌｄｅｎ，Ｄｏｕｇｌａｓ Ａ．ＴｒｅｃｏおよびＭｉｃｈａｅｌ Ｗ．Ｈｅａｒｔｌｅｉｎによる「Ｉｎ Ｖｉｖｏ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍ ｆｏｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ」との発明の名称の同時係属中の米国特許出願番号０８／３３４，７９７（１９９４年１１月４日出願）；Ｒｉｃｈａｒｄ Ｆ Ｓｅｌｄｅｎ，Ｄｏｕｇｌａｓ Ａ．ＴｒｅｃｏおよびＭｉｃｈａｅｌ Ｗ．Ｈｅａｒｔｌｅｉｎによる「Ｉｎ Ｖｉｖｏ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｅｒｙｔｈｒｏｐｏｉｅｔｉｎ ｏｒ Ｉｎｓｕｌｉｎｏｔｒｏｐｉｎ ｆｏｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ」との発明の名称の米国特許出願番号０８／３３４，４５５（１９９４年１１月４日出願）；ならびにＤｏｕｇｌａｓ Ａ．Ｔｒｅｃｏ、Ｍｉｃｈａｅｌ Ｗ．ＨｅａｒｔｌｅｉｎおよびＲｉｃｈａｒｄ Ｆ Ｓｅｌｄｅｎによる「Ｔａｒｇｅｔｅｄ Ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ＤＮＡ Ｉｎｔｏ Ｐｒｉｍａｒｙ ｏｒ Ｓｅｃｏｎｄａｒｙ Ｃｅｌｌｓ ａｎｄ Ｔｈｅｉｒ Ｕｓｅ ｆｏｒ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ」との発明の名称の米国特許出願番号０８／２３１，４３９（１９９４年４月２０日出願）に記載されている。これらの出願の各々の教示は、本明細書中に明示的に参考として援用される。

（Ｂ．核酸構築物）
このキメラタンパク質を発現するために使用される核酸構築物は、トランスフェクトされた哺乳動物細胞において染色体外（エピソーム）で発現される核酸構築物、またはランダムにかもしくは相同組換えを介して予め選択された標的部位にかのいずれかでレシピエントの細胞ゲノム中に組み込まれる核酸構築物であり得る。染色体外で発現される構築物は、キメラタンパク質コード配列に加えて、その細胞中でこのタンパク質の発現のために十分な配列と、必要に応じてその構築物の複製のために十分な配列とを含む。この構築物は、代表的には、プロモーター、キメラタンパク質コードＤＮＡ、およびポリアデニル化部位を含む。このキメラタンパク質をコードするＤＮＡは、その発現がプロモーターの制御下にあるような様式で、この構築物中に配置される。必要に応じて、その構築物は、さらなる成分を含み得、このさらなる成分は、例えば、以下のうちの１つ以上である：スプライス部位、エンハンサー配列、適切なプロモーターの制御下にある選択マーカー遺伝子、および適切なプロモーターの制御下にある増幅可能なマーカー遺伝子。

このＤＮＡ構築物が細胞のゲノム中に組み込まれる実施形態において、このＤＮＡ構築物は、キメラタンパク質コード核酸配列のみを含むことが必要である。必要に応じて、このＤＮＡ構築物は、プロモーターおよびエンハンサー配列、ポリアデニル化部位、スプライス部位、選択マーカーをコードする核酸配列、増幅可能なマーカーをコードする核酸配列および／またはレシピエント細胞中のゲノム中の選択された部位へのＤＮＡの組み込みを標的化するためのそのゲノムＤＮＡに相同なＤＮＡをコードする核酸配列（標的化ＤＮＡまたはＤＮＡ配列）を含み得る。

（Ｃ．細胞培養法）
そのキメラタンパク一コードＤＮＡまたはＲＮＡを含む哺乳動物細胞は、その細胞の増殖およびそのＤＮＡまたはＲＮＡの発現に適切な条件下で培養される。既知の方法および本明細書中に記載される方法を使用して、そのキメラタンパク質を発現する細胞が同定され得、そのキメラタンパク質が、既知の方法および本明細書中に記載される方法を使用して、単離および精製され得；キメラタンパク質生成の増幅を伴うかまたは伴わないかのいずれかである。同定は、例えば、そのキメラタンパク質をコードするＤＮＡまたはＲＮＡの存在を示す表現型を示す遺伝子改変哺乳動物細胞のスクリーニング（例えば、ＰＣＲスクリーニング、サザンブロット分析によるスクリーニング、またはそのキメラタンパク質の発現についてのスクリーニング）を介して、実行され得る。組み込まれたキメラタンパク質コードＤＮＡを含む細胞の選択は、そのＤＮＡ構築物中に選択マーカーを含めること、そして選択マーカー遺伝子を含むトランスフェクトもしくは感染した細胞を、その選択マーカー遺伝子を発現する細胞のみの生存に適切な条件下で培養すること、によって達成され得る。導入されたＤＮＡ構築物のさらなる増幅は、増幅に適切な条件下で遺伝子改変哺乳動物細胞を培養すること（例えば、増幅可能なマーカー遺伝子を含む遺伝子改変哺乳動物細胞を、複数コピーの増殖可能なマーカー遺伝子を含む細胞のみが生存し得る濃度の薬物の存在下で培養すること）によってもたらされ得る。

そのキメラタンパク質を発現する遺伝子改変哺乳動物細胞は、本明細書中に記載されるように、発現産物の検出によって、同定され得る。例えば、キャリアがｐ９７であるキメラタンパク質を発現する哺乳動物細胞は、サンドイッチ酵素イムノアッセイによって同定され得る。その抗体は、ＬＲＰ部分または活性因子部分に対して指向され得る。

本実施例は、インビトロでのトランス差異トーシスを評価するための例示的プロトコル、およびｐ９７およびＭＴｆ−Ｒレセプターモジュレーターもしくはリガンドとｐ９７レセプターまたは血液脳関門との相互作用を特徴付けるための例示的プロトコルを提供する。

（実施例Ｉ：脳血液関門のインビトロモデル）

（Ａ．星状細胞） 混合星状細胞の一次培養物を、新生児ラット大脳皮質から調製した（Ｄｅｈｏｕｃｋら、Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ（１９９２））。簡単に述べると、髄膜を除去した後、脳組織を８２μｍナイロンシーブに穏やかに通した。星状細胞を、１０％熱非働化ウシ胎仔血清を補充した２ｍｌの最適培養培地（ＤＭＥＭ）中に１．２×１０^５細胞／ｍｌの濃度で６ウェルマイクロプレート上に配置した。その培地を、１週間に２回交換した。

（Ｂ．ＢＢＣＥＣ） ウシ脳毛細管内皮細胞（ＢＢＣＥＣ）を、Ｃｅｌｌｉａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから入手した。この細胞を、１０％（ｖ／ｖ）ウマ血清および１０％熱非働化ウシ血清、２ｍＭグルタミン、５０μｇ／ｍｌゲンタマイシン、および１ｎｇ／ｍｌ塩基性線維芽細胞増殖因子を補充し、１日置きに添加した、ＤＭＥＭ培地の存在下で培養した。

Ｃ．ＢＢＢ。 ＢＢＢのインビトロモデルを、基本的には、Ｄｅｈｏｕｃｋら，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｃｉ．，３：３５７−３６５（１９９５）；およびＣｅｃｃｈｅｌｌｉら，Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．，３６：１６５−１７８（１９９９））に記載されるように、ＢＢＣＥＣと星状細胞との同時培養を使用して確立した。このモデルにおいて、管腔側は、血液脳関門の先端側または血清に面する側に対応する。管腔外側（ａｂｌｕｍｉｎａｌ ｓｉｄｅ）は、ＢＢＢの基底外側（すなわち、ニューロンに面する側）に対応する。この用語は、本明細書中全体を通して使用されることが注意される。細胞培養の前に、プレート挿入（Ｍｉｌｌｉｃｅｌｌ−ＰＣ ３．０μＭ；３０−ｍｍ直径）を、ラット尾部コラーゲンを使用して上側をコーティングした。次いで、それらを上記のように調製した星状細胞を含む６マルチウェルマイクロプレート中に配置し、ＢＢＣＥＣを、２ｍｌの同時培養培地中のフィルターの上側に入れた。このＢＢＣＥＣ培地を１週間に３回交換した。これらの条件下で、分化したＢＢＣＥＣは、７日後に、コンフルエントな単層を形成した。実験を、コンフルエントに達した後の５〜７日の間に行った。コンフルエントな状態での細胞数は、４０００００細胞／４．２ｃｍ^２またはＰｉｅｒｃｅ（Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ）製のマイクロ−ＢＣＡアッセイにより評価されるように、９０μｇタンパク質／４．２ｃｍ^２であった。

（Ｄ．スクロース透過性） スクロースの透過係数を測定して、上記のように、内皮細胞でコーティングしていないフィルターまたは内皮細胞でコーティングしたフィルターを使用して、内皮の透過性および完全性ならびにＢＢＣＥＣ単層の緊密性を確認した。簡潔には、結果を、時間（分）の関数としての［^１４Ｃ］−スクロースのクリアランス（μｌ）としてプロットした。透過係数（Ｐｅ）を、以下のように計算した：１／Ｐｅ＝（１／ＰＳｔ−１／ＰＳｆ）／フィルター面積（４．２ｃｍ^２）。ここでＰＳｔは、透過性×同時培養のフィルターの表面積であり；ＰＳｆは、フィルターの底側にコラーゲンをコーティングし、フィルターの底側に星状細胞をプレートしたフィルターの透過性である。

挿入物上で増殖した脳ＥＣ単層を、１ウェルあたり２ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓを含む６ウェルプレート（基底外側区画）に移した。リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液を、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、５．２ｍＭ ＫＣｌ、２．２ｍＭ ＣａＣｌ_２、０．２ｍＭ ＭｇＣｌ_２、６ｍＭ ＮａＨＣＯ_３、５ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、２．８ｍＭ Ｈｅｐｅｓ（ｐＨ７．４）から構成した。各先端チャンバにおいて、培養培地を、標識された［^１４Ｃ］−スクロースを含有するリンゲル／Ｈｅｐｅｓにより置き換えた。異なる時間に、挿入物を、別のウェルに入れた。実験の最後に、基底外側区画にある放射性トレーサーの量を液体シンチレーションカウンターで測定した。スクロースの透過係数（Ｐｅ）を、ＥＣでコーティングしたフィルターまたはＥＣでコーティングしていないフィルターを使用して、先に記載のように計算した（Ｄｅｈｏｕｃｋら，Ｊ Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，５８：１７９０−１７９７（１９９２））。実験の最後に、基底外側区画にある放射性トレーサーの量を液体シンチレーションカウンターで測定した。結果を、時間（分）の関数としての［^１４Ｃ］−スクロースのクリアランス（μｌ）としてプロットした。ＰＳｔ＝透過性×同時培養のフィルターの表面積；ＰＳｆ＝フィルターの底部側をコラーゲンおよび星状細胞でコーティングしたフィルターの透過性。透過係数（Ｐｅ）を、以下のように計算した：
１）クリアランス（μｌ）＝［Ｃ］_Ａ×Ｖ_Ａ／［Ｃ］_Ｌ
［Ｃ］_Ａ＝管腔外側トレーサー濃度
Ｖ_Ａ＝管腔外側チャンバの容積
［Ｃ］_Ｌ＝管腔トレーサー濃度
２）１／Ｐｅ＝（１／ＰＳｔ−１／ＰＳｆ）／フィルター面積（４．２ｃｍ^２）
図１および図２は、コントロール実験を示す。

簡潔には、図１において、ＢＢＣＥ細胞でコーティングしたフィルターまたはＢＢＣＥ細胞でコーティングしていないフィルタを、１ウェルあたり２ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓを含む６ウェルプレート（基底外側区画）に３７℃にて２時間移した。各先端チャンバにおいて、培養培地を、標識された［^１４Ｃ］−スクロースを含有する、１ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓに置換した。異なる時間において、挿入物を別のウェルに入れた。実験の最後に、基底外側区画にある放射性トレーサーの量を液体シンチレーションカウンターで測定した。ＰＳｆの傾きおよびＰＳｔの傾きの差異は、細胞の単層が、スクロース透過性に対する有意な耐性を提供することを実証し、従って、このことにより、予備インキュベートに関係なく、細胞間の密着結合の存在が確認される。

図２において、１マイクロモル濃度のｐ９７タンパク質（Ｓｙｎａｐｓｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ，Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ，Ｃａｎａｄａにより提供される）を管腔側に添加して、スクロース透過性に対するその効果を決定した。ｐ９７の非存在下でのスクロース透過性は、１．２１×１０^−３ｃｍ／分であったのに対し、ｐ９７の存在下では、スクロース透過性は、１．３５×１０^−３ｃｍ／分であった。この結果は、スクロース透過性に有意な変化がなかったことを示す。細胞の非存在下でのコントロール実験により、フィルター単独と比較して、ＢＢＢモデルの相対的有効性が実証される。

図１および２において、ＰｓｆおよびＰｓｔとは、細胞ありおよびなしの、膜を通る流速をいう。それらは、細胞を有する膜の透過性を計算するために使用される。ＰｓｆおよびＰｓｔの定義は、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，５８：１７９０−９７（１９９２）に見いだされ、その教示は、本明細書中に参考として援用される。ＰＳｔおよびＰＳｆの定義は、それぞれ、同時培養についてのクリアランス曲線の傾きおよびコントロールフィルタのクリアランス曲線の傾きである。内皮単層単独のＰＳ値は、ＰＳｅと規定される。ここで：
１／ＰＳｅ＝１／ＰＳｔ−１／ＰＳｆ
内皮単層単独の透過性は、Ｐｅと規定される。ここで：
Ｐｅ＝ＰＳｅ／Ａ（ここでＡは、膜の面積である）。

（実施例ＩＩ：ｐ９７のＢＢＣＥＣおよびラット脳内皮細胞との結合）
（Ｂ．ｐ９７の結合研究） ｐ９７の結合を、ＢＢＣＥＣおよびラット脳内皮細胞（これらを、星状細胞からの何らかの妨害を避けるために、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ中で２時間プレーインキュベートした）を用いて行った。

図３は、コールドｐ９７、トランスフェリンおよびラクトフェリンを使用した、ｐ９７の競合的結合を示す。結合実験のために、細胞を、［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）および漸増濃度のコールドｐ９７または高濃度の（７．５マイクロモル濃度）トランスフェリンまたはラクトフェリンの存在下で、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ中で２時間４℃にてインキュベートした。インキュベーションの終わりに、フィルターを、４ｍｌの冷ＰＢＳを使用して３回４℃にて穏やかに洗浄した。次いで、内皮細胞の結合した放射活性を、培養挿入物の膜を取り出して、ガンマカウンターで計数することにより決定した。

図３の結果は、ＢＢＣＥＣへの［^１２５Ｉ］−ｐ９７の結合が、コールドｐ９７およびラクトフェリンにより競合的に阻害されたが、重要なことには、トランスフェリンは、［^１２５Ｉ］−ｐ９７の、ＢＢＣＥＣ上のそのレセプターへの結合をブロックも減少もしなかったことを示す。このデータは、［^１２５Ｉ］−ｐ９７が、以前に仮定されていたトランスフェリンレセプター（Ｔｆ−Ｒ）に結合しないことを最初に証明する。

（Ｃ．ラット脳内皮細胞におけるｐ９７の結合）
図３と同様に、図４は、このとき、ラット脳内皮−４細胞を使用した（ＲＢＥ４は、ＡＴＣＣにより商業的に供給される）ことを除いて、比較研究を示す。ＲＢＥ４細胞を、１０％ 熱不活性化ウシ胎児血清を補充した最小必須培地αおよびＨａｍ’ｓ Ｆ１０（１：１）中で、５％ ＣＯ_２下で３７℃にて２４ウェルプラスチック組織培養フラスコ中、単層で増殖させた。ｐ９７結合実験のために、ＲＢＥ４細胞を、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ中で２時間３７℃にてプレインキュベートした。２００μｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓ中の^１２５Ｉ−ｐ９７を、高濃度のコールドｐ９７、ヒトのホロ（ｈｏｌｏ）トランスフェリンまたはヒトラクトフェリンの存在下あるいは非存在下で４℃にて２時間、ＲＢＥ４細胞に添加した。インキュベーション後、細胞を、ＰＢＳで４回洗浄し、細胞と会合した^１２５Ｉ−ｐ９７を、測定した。

図４は、コールドｐ９７（１０マイクロモル濃度）およびラクトフェリン（１０マイクロモル濃度）がともに、ＲＢＥ４細胞への［^１２５Ｉ］−ｐ９７結合を競合的に阻害するのに対し、トランスフェリン（１０マイクロモル濃度）は阻害しないことを示す。

（実施例ＩＩＩ：ｐ９７とヒト脳毛細管との相互作用）
（Ａ．ヒト脳毛細管の単離） 血液脳関門の毛細管を、Ｄａｌｌａｉｒｅら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６７：２２３２３−２２３２７（１９９２）により以前に記載された手順（わずかに改変した）により、ヒト脳皮質から単離した。ヒト脳を、死後に得た。その脳から、髄膜、表在性の大血管および脈絡叢を取り除いた。以下の手順の全てを、４℃にて行った。大脳皮質を、５容積のリンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液中、Ｐｏｌｙｔｒｏｎ（Ｂｒｉｎｋｍａｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｒｅｘｄａｌｅ，Ｏｎｔａｒｉｏ，Ｃａｎａｄａ）を使用してホモジナイズした。そのホモジネートを、等容量のＤｅｘｔｒａｎ Ｔ−７０（１００ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓ中に２７ｇ）と混合した。懸濁液を、２５，０００ｇにて１０分間遠心分離した。ペレットを、３０ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓ中に再懸濁し、２５０μｍのナイロンメッシュスクリーンを通過させた。このナイロンメッシュをすすぎ、濾液を、２５，０００ｇで１０分間の遠心分離により、遠心分離した。ペレットを、３０ｍｌの冷リンゲル／Ｈｅｐｅｓ中に再懸濁し、２．５ｃｍ×４．０ｃｍ硝子ビーズカラム［４０／６０−メッシュ（０．２５ｍｍ）硝子ビーズ］を通過させた。このカラムを、２５ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓで２回洗浄した。硝子ビーズをビーカーに移し、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ中で激しく攪拌して（４℃にて１５分）、ビーズから微小血管を分離した。ビーズを沈殿させ、上清をデカントし、４℃に保持した。そのビーズを、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ中でさらに１５分間攪拌した。上清をプールし、微小血管を、２５，０００ｇにて１０分間遠心分離することにより回収した。脳毛細管を、使用時まで−８０℃にて保持した。

（Ｂ．ヒト脳毛細管におけるｐ９７蓄積） 迅速濾過技術を使用して、ヒト脳毛細管における［^１２５Ｉ］−ｐ９７の蓄積を測定した。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の蓄積を、単離したヒト脳毛細管（１００μｇ／アッセイ）において３７℃にて１時間測定した。インキュベーション培地は、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を含み、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液中で１００ｎＭ ｐ９７の最終濃度を含んだ。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の蓄積を、５μＭのコールドｐ９７、ホロトランスフェリンまたはラクトフェリンの存在下あるいは非存在下で行った。インキュベーション後、蓄積を、１ｍｌの冷停止溶液（１５０ｍＭ ＫＣｌ、０．１％ ＢＳＡおよび５ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．５）の添加により停止した。懸濁液を、０．４５μＭ孔サイズのＭｉｌｌｉｐｏｒｅフィルターを介して真空下で濾過した。このフィルターを、８ｍｌの停止溶液を使用してすすぎ、放射活性を計数した。毛細管への放射活性の非特異的結合を、インキュベーション培地を添加する前に氷冷停止溶液を毛細管に添加することにより決定した。この値を、１時間のインキュベーション後に得た蓄積値から差し引いた。この結果を、脳毛細管１μｇあたりに蓄積した［^１２５Ｉ］−ｐ９７のｎｇとして表した。

図５は、実験結果を示す。図３および４における知見と一致して、コールドｐ９７（５マイクロモル濃度）またはラクトフェリン（５マイクロモル濃度）は、ヒト脳毛細管細胞への競合的［^１２５Ｉ］−ｐ９７結合を有意に阻害するのに対して、トランスフェリン（５マイクロモル濃度）は、有意な競合を示さないことが見いだされる。この知見は、ｐ９７のそのレセプターへの結合がトランスフェリンによりブロックされないことを確認する。

図６は、反復実験である。今回はβ−アミロイドペプチドについてさらなる競合アッセイを使用したことを除いて、図５の実験と同様に行った。明らかに、β−アミロイドペプチド１−４０は、ラクトフェリンとともにレセプター結合についてｐ９７と競合するが、トランスフェリンとは競合しない。この知見は、ｐ９７の結合およびＢＢＢを横切る輸送を担うレセプターがＲＡＧＥおよび／またはＬＲＰ１であることを示す。

図７は、結合研究の前にリガンドｐ９７、ＬｆおよびＴｆが加熱されたかまたは加熱されていない実験の結果を示す。全ての場合において、結合実験は、結合を、４℃または３７℃のいずれかにて行ったことを除いて、先に記載のようにトランスウェル装置で行った。３７℃での試行については、別個の実験を行った。この実験において、リガンドを３０分間沸騰させ、次いで、トランスウェルプレートに施す前に迅速に冷却した。結果は、熱変性したｐ９７タンパク質が正常ｐ９７と比較して、細胞単層中で有意に低い蓄積を有したことを示す；しかし、３７℃での両方の形態は、４℃より高い程度まで結合した。同様に、熱変性Ｌｆは、その天然の対応物より、ＢＢＢモデル細胞において有意に低い蓄積を有した。トランスフェリン自体は、非常に小さな蓄積しか示さない。

図７において、Ｌｆおよびｐ９７の蓄積における顕著な差異全体を明瞭にすることは、Ｌｆが実験の最後にほぼ２倍程度の高さであるので、重要である。ｐ９７は、ＢＢＢモデル細胞を介して実質的にトランスサイトーシスされ、管腔外側領域に分泌されるのに対し、Ｌｆはそうではないことを覚えておかねばならない。この効果は、Ｌｆがｐ９７より高速でＢＢＢに取り込まれ得るという不正確な結論をもたらす。

（実施例ＩＶ：ｐ９７のトランスサイトーシス）

トランスサイトーシス実験を、以下のように行った。ＢＢＣＥＣで覆った１つの挿入物を、２ｍｌのリンゲル／Ｈｅｐｅｓを有する６ウェルマイクロプレートを備えるトランスウェル装置にセットし、３７℃にて２時間予備インキュベートした。プレートを、示した温度（４℃または３７℃）にゆっくりと合わせた。［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５０ｎＭ）を細胞で覆ったフィルターの上側に添加した。ＢＢＣＥＣの管腔外側による、あり得るｐ９７の再エンドサイトーシスを避けるために、種々の時間で、挿入物を別のウェルに移した。実験の最後に、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、ＴＣＡ沈降により、ウェルの下側チャンバの５００μＩ中で評価した。ｐ９７もまた、ウェルの下側チャンバの５０μｌ中で、ｍＡｂ Ｌ２３５を使用して、ウェスタンブロットにより測定した。

図８は、ｐ９７トランスサイトーシスが、４℃より３７℃にて有意に高かったことを示す。この結果は、ｐ９７が、温度依存性様式にて、おそらくレセプター媒介性取り込みにより、この血液脳関門モデルを横切るエネルギー依存性プロセスにおいて活発に輸送されることを示す。

図９は、ｐ９７のトランスサイトーシスもまた、飽和可能な現象であり、従って、この血液脳関門モデルにおいて特定のＭＴｆ−レセプタータンパク質がさらに関連することを確認する。これらの実験を、先に記載のように行った。トランスサイトーシスの量の測定を、示された時点で行った。

トランスサイトーシスに対する潜在的に競合性のリガンドの効果を、一連の実験で評価した。図１０ａにおいて、^１２５Ｉ−ｐ９７のトランスサイトーシスを、コールドｐ９７（５マイクロモル濃度）、Ｌｆ（５マイクロモル濃度）、およびＴｆ（５マイクロモル濃度）の存在下で比較した。これらの濃度において、コールドｐ９７のみが、標識ｐ９７のトランスサイトーシスを首尾よく減少させた。図１０ｂにおいて、β−アミロイドタンパク質（５マイクロモル濃度）もまた、標識ｐ９７のトランスサイトーシスを遅延させることも減少させることもできなかった。より多量のリガンドが、ｐ９７トランスサイトーシスを確かに妨害した（データは示さず）。図１０ｃにおいて、ＲＡＰ（ＬＤＬレセプターファミリーの既知のポリペプチドインヒビター）を、細胞に適用した（２５μｇ／ｍｌ）。ＲＡＰは、ｐ９７のトランスサイトーシスを有意に阻害し、従って、このことは、ＭＴｆ−ＲとしてのＬＤＬレセプターファミリー（特に、ＬＲＰ１）に直接関連する。

（実施例Ｖ：脳におけるｐ９７の蓄積およびトランスサイトーシス）
（Ａ．脳取り込みおよびインサイチュ脳灌流） ［^１２５Ｉ］−ｐ９７の脳取り込みを測定するために、マウスに、頸静脈を介して、２００μｌの注射溶液中、約４ｐｍｏｌの［^１２５Ｉ］−ｐ９７、［^１２５Ｉ］−ＢＳＡまたはヒト［^１２５Ｉ］−ホロ−トランスフェリンを各々与えた。１時間後、動物を屠殺し、心臓大動脈を介して緩衝液で灌流した。血清および脳サンプルを回収し、放射活性をのレベルを測定した。インサイチュ脳灌流を、先に記載したように行った（Ｄａｇｅｎａｉｓ，Ｃ．，Ｒｏｕｓｓｅｌｌｅ，Ｃ．，Ｐｏｌｌａｃｋ，Ｇ．Ｍ．およびＳｃｈｅｒｒｍａｎｎ，Ｊ．Ｍ． Ｊ．Ｃｅｒｅｂ．Ｂｌｏｏｄ Ｆｌｏｗ Ｍｅｔａｂ．２０：３８１−３８６（２０００））。簡潔には、脳の右半球を、右側総頸動脈中に挿入したカテーテルを介して、外枝の結紮後、Ｋｒｅｂｓ−重炭酸緩衝液（ｐＨ７．４、９５％ Ｏ２および５％ ＣＯ２とともに２．５ｍｌ／分の流速にて１０分間）中１０ｎＭの［^１２５Ｉ］−ｐ９７または［^１２５Ｉ］−ホロトランスフェリンで灌流した。マウスを、断頭して灌流を終わらせ、右半球を氷上で分離し、その後毛細管除去に供した（Ｔｒｉｇｕｅｒｏ，Ｄ．，Ｂｕｃｉａｋ，Ｊ．およびＰａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｊ Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，５４：１８８２−１８８８（１９９０））。ホモジネート、上清、ペレットおよび灌流液のアリコートを、ＴＣＡ沈降により［^１２５Ｉ］−タンパク質中のそれらの含有量を測定し、それらの見かけのＶ_Ｄを評価するために採取した。

（Ｂ．タンパク質のヨード化） ｐ９７、ウシホロトランスフェリンおよびウシラクトフェリンを、Ｓｉｇｍａ製のヨードビーズ（ｉｏｄｏ−ｂｅａｄ）を使用して、標準的な手順を使用してヨウ素化した。ウシホロトランスフェリンおよびウシラクトフェリンを、０．１Ｍ リン酸緩衝液、ｐＨ６．５（ＰＢ）中に希釈した。ｐＨ７．０の中性化クエン酸中のＳｙｎａｐｓｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓから入手したｐ９７を、このＰＢに対して透析した。２種類のヨード化ビーズを、各タンパク質について使用した。これらのビーズを、Ｗｈａｔｍａｎフィルター上で３ｍｌのＰＢで２回洗浄し、６０μｌのＰＢ中に再懸濁した。Ａｍｅｒｓｈａｍ−Ｐｈａｒｍａｃｉａ ｂｉｏｔｅｃｈ製の^１２５Ｉ（１ｍＣｉ）を、室温にて５分間ビーズ懸濁液に添加した。各タンパク質のヨード化を、１００μｇ（８０〜１００μｌ）の添加により開始した。室温にて１０分間インキュベートした後、上清を、Ｐｉｅｒｃｅ製の、５ｍｌの架橋デキストランを予め充填した脱塩カラムにアプライし、１０ｍｌのＰＢＳで^１２５Ｉタンパク質を溶出した。０．５ｍｌの画分を回収し、各画分の５μｌ中の放射活性を測定した。^１２５Ｉタンパク質に対応する画分をプールし、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．４に対して透析した。放射性標識の効率は、０．６〜１×１０^８ｃｐｍ／１００μｇタンパク質であった。

（トランスサイトーシス実験および結合試験） ＢＢＣＥＣで覆った１つの挿入物を、２ｍｌのリンゲル−Ｈｅｐｅｓを含む６ウェルマイクロプレートにセットし、３７℃にて２時間プレインキュベートした。次いで、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、挿入物の上側に添加した。ＢＢＣＥＣの管腔外側によるｐ９７のあり得る再エンドサイトーシスを避けるために、種々の時間で、挿入物を新たなウェルへと連続的に移した。実験の最後に、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、ＴＣＡ沈降により各ウェルの下側チャンバの５００μｌ中で定量した。本発明者らはまた、Ｌａｅｍｍｌｉの方法（Ｌａｅｍｍｌｉ，Ｕ．Ｋ． Ｎａｔｕｒｅ；２２７：６８０−６８５（１９７０））に従って、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより各ウェルの下側チャンバの５０μｌ中でｐ９７を測定した。タンパク質を、７．５％ アクリルアミドゲル上で分離し、クーマシーブルーで染色し、乾燥し、デンシトメトリーにより分析した。結合実験については、細胞をサポニン（０．５％ ｗｔ／ｖｏｌ）ありまたはなしで処理して、先に記載されたように（Ｄｅｓｃａｍｐｓ，Ｌ．，Ｄｅｈｏｕｃｋ，Ｍ．Ｐ．，Ｔｏｒｐｉｅｒ，Ｇ．およびＣｅｃｃｈｅｌｌｉ，Ｒ．Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７０：Ｈ１１４９−Ｈ１１５８（１９９６））、細胞膜を透過性にした。４℃にて２時間後、ＥＣを穏やかに洗浄し、ＥＣに結合した［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、液体シンチレーションカウンターで定量した。

（ヒト脳毛細管におけるｐ９７蓄積） ヒト脳毛細管を、先に記載の手順（Ｄａｌｌａｉｒｅ，Ｌ．，Ｔｒｅｍｂｌａｙ，Ｌ．およびＢｅｌｉｖｅａｕ，Ｒ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．２７６：７４５−７５２（１９９１），Ｄｅｍｅｕｌｅ，Ｍ．ら、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ．９３：６２−６６（２００１）を参照のこと）により分離した。［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、非標識ｐ９７、ホロトランスフェリンまたはラクトフェリンの存在下あるいは非存在下で、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液中で毛細管（１００μｇ）とともにインキュベートした。取り込みを、氷冷停止溶液（１５０ｍＭ ＫＣｌ、０．１％ ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および５ｍＭ Ｈｅｐｅｓ，ｐＨ ７．５）の添加により停止し、懸濁液を、０．４５μＭ孔サイズのＭｉｌｌｉｐｏｒｅフィルターを介して真空下で濾過した。フィルターを、８ｍｌの停止溶液ですすぎ、放射活性をアッセイした。毛細管に対する放射活性の非特異的結合を、インキュベーション培地を添加する前に氷冷停止溶液を毛細管に添加することにより決定した。この値を、１時間のインキュベーション後に得た蓄積値から差し引いた。

（実施例ＶＩ．例示的方法）
（細胞培養） 細胞を、１０％熱不活化ウシ胎仔血清を補充したＤＭＥＭ（正常な星状細胞）；１０％ 仔牛血清を補充したＤＭＥＭ高グルコース、１ｍＭ ピルビン酸ナトリウム（ＣＴＸ）；１０％仔牛血清を補充したＤＭＥＭ高グルコース（ＲＧ２）；１０％仔牛血清および２ｍＭグルタミンを補充したＲＰＭＩ−１６４０（ＣＮＳ−１）；１０％ 仔牛血清を補充したＨａｍ’ｓ Ｆ１２（Ｃ６）；１０％ 仔牛血清を補充したＭＥＭ、１ｍＭピルビン酸ナトリウム（Ｕ−８７、Ｕ−１３８）中で、３７℃、５％ ＣＯ_２下で単層にて増殖させた。

（［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込み） 細胞を、５％ ＣＯ_２下で３７℃にて、６つのマルチウェマイクロプレートにおいて単層にて増殖させた。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みを、星状細胞および星状細胞腫において３７℃にて２時間にわたり測定した。インキュベーション培地は、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を含み、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液中で５０ｎＭ ｐ９７の最終濃度を含んだ。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みを、５μＭのコールドｐ９７の存在下あるいは非存在下で行った。インキュベーション後、細胞単層を、冷リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液で３回洗浄した。Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ ０．１％を添加し、［^１２５Ｉ］−ｐ９７取り込みを、ＴＣＡ沈降により、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００可溶性画分中で評価した。

（ＲＮＡ抽出） ６ウェルプレート中または７５ｃｍ^２プラスチック組織培養フラスコ中の細胞を、８０〜９０％コンフルエントになるまで、最適な培養培地を用いて５％ ＣＯ_２下で３７℃にて増殖させた。総細胞ＲＮＡを、Ｔｒｉｚｏｌ（Ｇｉｂｃｏ ＢＲＬ，Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，ＯＮ）中で保存した。この溶液を、抽出時まで−８０℃にて凍結した。この溶液を解凍し、室温にて３分間５：１のクロロホルムと混合した。懸濁液を、４℃にて１２０００ｇで遠心分離した。透明な上清を回収し、次いで、１：１のイソプロパノールと室温にて１５分間混合した。この混合物を、１２０００×ｇで１０分間４℃にて遠心分離した。ペレットを、７０％ エタノールで洗浄し、乾燥させ、その後、ＲＮａｓｅを含まないＨ_２Ｏ中に再懸濁した。

（ＲＴ−ＰＣＲ） ＲＴ−ＰＣＲを、以下のＬＤＬ−Ｒファミリーのメンバーについて行った：ＬＲＰ、ＬＲＰ１Ｂ、メガリン、ＬＤＬ、ＶＬＤＬ、ＬＲＰ８、ＬＲ１１、ＲＡＰ、ＬＲ３、キューブリン（ｃｕｂｕｌｉｎ）およびＰ９７。ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）合成を、ｃＤＮＡ一工程合成キット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＵＳＡ）を使用して、製造業者のプロトコルに従って、１（ｇの総ＲＮＡを用いて行った。（１×の反応ミックス、ＲＮＡ １（ｇ、０．２（Ｍの両方のプライマー、１（ｌのＲＴ／白金タグミックス）。生成したｃＤＮＡを、ＭａｃＶｅｃｔｏｒ ７．０（Ｏｘｆｏｒｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｌｔｄ，Ｏｘｆｏｒｄ，ＵＫ）で生成したプライマーを使用して増幅した。次いで、全てのその後のアッセイを、線形範囲内でｃＤＮＡの増幅を生じる条件下で行った。ＲＴ逆転写を、５０℃にて３０分間行った。全てについて３５サイクルのＰＣＲ増幅を、以下のように行った：９４℃にて３０秒変性、６０℃にて３０秒アニーリング、および７２℃にて３０秒伸長。完結段階を７２℃で３０分間行った。テンプレート以外の全ての成分を含むチューブを、全ての実施に含め、ネガティブコントロールとした。増幅したＰＣＲ産物を、ＴＡＥ（４０ｍＭ Ｔｒｉｓ、３６０ｍＭ 酢酸、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１２．５ｆＭ エチジウムブロマイド）中の２％アガロースゲル上で電気泳動し、紫外線下で可視化し、続いてデンシトメトリー分析を行った。

（ウェスタンブロット） 細胞溶解物（２５μｇのタンパク質）を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、ＰＶＤＦ膜に電気的に転写した。膜を、０．１％ Ｔｗｅｅｎを含有するＴＢＳ（ＮａＣｌ １２５ｍＭ、Ｔｒｉｓ ２０ｍＭ、ｐＨ７．５）中の５％ 無脂肪乾燥ミルクにおいて、４℃にて一晩ブロッキングした。適切な一次抗体およびセイヨウワサビペルオキシダーゼ結合体化二次抗体との連続インキュベーションを、室温にて６０分間行った。抗体とのインキュベーション全てを、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎ ０．１％での３×１５分の洗浄後に行った。免疫反応性タンパク質を、ＥＣＬシステム（Ａｍｅｒｓｈａｍ−Ｐｈａｒｍａｃｉａ，Ｂａｉｅ ｄ’Ｕｒｆｅ，Ｑｕｅ）を使用して、検出した。

（リガンド結合） 簡潔には、リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液中の５μＭのコールドＰ９７の存在下または非存在下で、４℃にて１時間、細胞を［^１２５Ｉ］−ｐ９７とインキュベートした。インキュベーション後、細胞単層を、冷リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液で３回洗浄した。４℃でのリガンド結合の後、細胞単層を、冷リンゲル／Ｈｅｐｅｓ溶液で３回洗浄し、Ｐｉｅｒｃｅ製のＤＳＳ（ジスクシンイミジルスベレート）またはＬｏｍａｎｔ’ｓ試薬ＤＳＰ（ジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート））とともにインキュベートした。架橋後、細胞を溶解し、タンパク質を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ電気泳動により分離した。ゲルを固定し、乾燥し、約３週間−５℃にてＫｏｄａｋフィルムに露出し、その後、発色させた。架橋を、製造業者のプロトコルの通りに正確に行った。

（ＢＩＡｃｏｒｅ分析） ＭＡｂ Ｌ２３５を、先に記載されたように（Ｊｏｈｎｓｓｏｎ，Ｂ．，Ｌｏｆａｓ，Ｓ．，およびＬｉｎｄｑｕｉｓｔ，Ｇ． Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９８：２６８−２７７（１９９１））、１級アミン基を介して、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）／Ｎ−エチル−Ｎ’−（ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド（ＥＤＣ）カップリング剤を使用して、ＣＭ５センサチップに共有結合させた。

簡潔には、最初に、カルボキシメチル化デキストランを、流速５μｌ／分にて、５０μｌのＮＨＳ／ＥＤＣ（５０ｍＭ／２００ｍＭ）で活性化した。次いで、１０ｍＭ 酢酸緩衝液、ｐＨ４．０中のこのｍＡｂ Ｌ２３５（５μｇ）を注入して、非反応ＮＨＳ−エステルを、３５μｌの１Ｍ エタノールアミンヒドロクロリド、ｐＨ８を用いて不活性化した。約８０００〜１００００相対単位のｍＡｂ ２３５を、センサチップ表面上に固定化した。リンゲル／Ｈｅｐｅｓ緩衝液を溶出緩衝液として使用して、シグナルプラズモン共鳴（ｓｉｇｎａｌ ｐｌａｓｍｏｎ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ）（ＳＰＲ）をモニターした。同じ溶出緩衝液中に希釈したｐ９７を、種々の時間の長さにわたり沸騰させ、室温まで冷却し、センサチップ表面に注入した。得られたＳＰＲを、沸騰させていないｐ９７のＳＰＲと比較した。

ヒト［^１２５Ｉ］−ｐ９７の、マウスにおける静脈内注射の１時間後の脳取り込みを評価し、そして［^１２５Ｉ］−ＢＳＡまたはヒト［^１２５Ｉ］−トランスフェリンについて得られた評価と比較した（図１１ａ）。ｐ９７、ＢＳＡおよびホロトランスフェリンについての脳／血清比は、それぞれ０．０２５、０．００２および０．００８であり、ｐ９７について、より高い脳蓄積を示す。この観察が、脳のより高い浸透に関連するか否かを決定するために、本発明者らは、ｐ９７およびトランスフェリンの見掛けの分布容積（Ｖ_Ｄ）を、マウスにおけるインサイチュ脳灌流によって測定した（図１１ｂ）。１０分間の灌流の後、両方のタンパク質についての見掛けのＶ_Ｄを、脳全体のホモジネートならびに脳の毛細血管および脳の実質について計算した。これらの条件下で、脳の実質におけるトランスフェリンの見掛けのＶ_Ｄは、２．４ｍｌ／１００ｇであり、これは、１．７ｍｌ／１００ｇ（データは示さない）の血管マーカー［^１４Ｃ］−イヌリンについての脳Ｖ_Ｄよりわずかに高い。重要なことには、脳の実質におけるｐ９７の見かけのＶ_Ｄは、１７．２ｍｌ／１００ｇであり、トランスフェリンについてのものより８．８倍高く、脳の毛細血管のより多くの通過を示す。ＢＢＢを横切るｐ９７の移送をさらに調査するために、ＢＢＢのインビトロモデルを横切る［^１２５Ｉ］−ｐ９７の通過を、３７℃および４℃で測定した（図１１ｃ）。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の、ＢＢＣＥＣ単一層の先端から基底外側表面への移動の劇的な減少が、４℃において観察され、ｐ９７のトランスサイトーシスが、能動的な機構を必要とすることを示す。

３７℃での［^１２５Ｉ］−ｐ９７のトランスサイトーシスを、ＢＢＣＥＣ単一層を横切る、先端から基底外側の方向と、基底外側から先端への方向での両方で測定して、ｐ９７の任意の方向性移入を確認した（図１１ｄ）。この図は、ＢＢＣＥＣモデルにおけるｐ９７移送が、非常に方向性であることを実証する。この実験において、［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）を、ＢＢＣＥＣの管腔側または非管腔（ａｂｌｕｍｉｎａｌ）側に添加した。３７℃で２時間のインキュベーション後、この膜の反対側での量を測定した。この結果は、ｐ９７移送が、実質的に、管腔側から非管腔側の方向であることを実証し、これは、インビボで、脳の毛細血管の脳／血清の面（すなわち、毛細血管の内側）から脳の神経細胞へのｐ９７の送達に対応する。２時間後、［^１２５Ｉ］−ｐ９７移送は、先端から基底外側への方向で測定された場合、約３倍高く、脳へのｐ９７のかなり優先的な移送を示す。

（ｐ９７結合活性の局在化および可飽和性）
細胞内ｐ９７結合部位の存在および範囲を評価するために、ＢＢＣＥＣをサポニンで処理した（図１２ａ）。ＥＣのサポニン透過化（ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ）は、ＢＢＣＥＣと結合した［^１２５Ｉ］−ｐ９７の量を４倍増加させた。さらに、サポニン処理後の［^１２５Ｉ］−ｐ９７の結合は、非標識ｐ９７の存在下で減少した（図１２ｂ）。２００倍のモル過剰の非標識ｐ９７は、放射性同位元素標識の結合を約５０％阻害し、ＥＣとのｐ９７の相互作用の大部分が飽和可能であることを示した。

特異的なｐ９７結合の値を、高濃度の非標識ｐ９７の存在下で測定したｐ９７の非特異的結合を減算することによって計算した。これをスキャッチャードプロットで表す（図１２ｃ）。このプロットの解析は、約１μＭのＫｄおよび４×１０^６部位／細胞で、ｐ９７についての単一の結合部位と一致する。

ＢＢＣＥＣ単一層への、ｐ９７、トランスフェリンおよびラクトフェリンの結合の比較。

上記表において、図１２からのｐ９７の結果（Ｋｄおよび結合部位の数／細胞）を、トランスフェリンおよびラクトフェリンについての公開された値と比較する（Ｄｅｓｃａｍｐｓら、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７０：Ｈ１１４９−Ｈ１１５８，１９９６；Ｆｉｌｌｅｂｅｅｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：７０１１−７０１７，１９９９を参照のこと）。

（ｐ９７トランスサイトーシスの効率）
ｐ９７トランスサイトーシスの効率を、ｐ９７とウシホロトランスフェリンとの両方の通過を同一の条件下で比較することによって、評価した（図１３ａ）。ＥＣの先端から基底外側表面へのｐ９７の移送は、３７℃において、トランスフェリンについてずっと高い（図１３ａ）。熱変性は、ＢＢＣＥＣ単一層を通るｐ９７とホロトランスフェリンとの両方の通過を減少させた。このことは、これらのトランスサイトーシスが、コンホメーション依存性であることを示す。ｐ９７は、Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液中での熱変性に耐性であるので（図１３ｂ）、変性条件を決定することが必要であった。このタンパク質のコンホメーションを、ｐ９７とモノクローナル抗体（ｍＡｂ）Ｌ２３５（この抗体は、ｐ９７におけるコンホメーションエピトープを認識する）との間でのリアルタイムでの生物学的相互作用分析を使用して評価した。なぜなら、このタンパク質についての酵素活性は未だに規定されていないからである。この分析アプローチのために、ｍＡｂ Ｌ２３５をセンサチップの表面に固定し、そしてネイティブｐ９７および５分間、１０分間、２０分間、または３０分間煮沸したｐ９７に、曝露した。ネイティブタンパク質の表面プラズモン共鳴信号、ＢＢＣＥ細胞におけるｐ９７の蓄積は、５．７μｇ／ｃｍ^２であり、一方で、ウシトランスフェリンについては、有意な蓄積が観察されない。これらの結果は、ｐ９７移送系が、トランスフェリン移送系よりずっと大きい能力を有することを示す。

（経内皮移送後のｐ９７の安定性およびＢＢＣＥＣ単一層の一体性）
３７℃および４℃でのトランスサイトーシス後のｐ９７の一体性を試験するために、ウェルの下の方の５０μｌの画分を、３０分後、６０分後、８０分後、および１２０分後に回収した。次いで、タンパク質をＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離し、そしてゲル染色によって可視化した（図１４ａ）。組換えｐ９７の、明らかな分解なしでの時間依存性トランスサイトーシスが観察される。このタンパク質のトランスサイトーシスは、４℃で実験を実施するより３７℃で実験を実施する場合の方が、ずっと高い。３０分において観察される低分子量のタンパク質は、アッセイ中に残っている血清タンパク質のみである。さらに、ゲルを走査し、そしてＢＢＣＥＣ単一層を通過したｐ９７の量を、既知量のｐ９７を使用して評価した（図１４ｂ）。経内皮トランスサイトーシス後のインタクトなｐ９７の総量は、３５μｇ／ｃｍ^２であり、これは、ＴＣＡ沈降後の図１３ａに示される量と非常に類似しており、このことは、ｐ９７のヨウ素化が、このトランスサイトーシスを妨害しないことを示す。ｐ９７は、トランスフェリンよりずっと速く移送されるので、［^１４Ｃ］−スクロースに対する透過性を、高濃度のｐ９７の存在下で測定した（図１４ｃ）。スクロースのクリアランスの有意な増加は、ｐ９７の存在下では検出不可能である。さらに、ｐ９７の存在下でのスクロースの透過係数（Ｐｅ）は、１．０４±０．１５×１０^−３ｃｍ／分であり、ｐ９７の非存在下で測定された１．０７±０．１９×１０^−３ｃｍ／分の値と有意には異ならない（図１４ｄ）。これらのデータは、ｐ９７の迅速な通過が、ＢＢＣＥＣ単一層の一体性の変化に無関係であることを示す。

（［^１２５Ｉ］−ｐ９７トランスサイトーシスに対するｐ９７およびトランスフェリンの効果）
このｐ９７移送が飽和可能であるか否か、およびこのｐ９７移送にトランスフェリンレセプターが関与するか否かを確立するために、ＢＢＣＥＣ単一層を横切る［^１２５Ｉ］−ｐ９７の先端から基底への移送を、２００倍モル過剰のｐ９７、ウシホロトランスフェリンまたはヒトホロトランスフェリンの存在下で測定した（図１５）。過剰の非標識ｐ９７は、［^１２５Ｉ］−ｐ９７の移送を６９％減少させ（図１５ａ）、一方でウシまたはヒトのいずれかのホロトランスフェリンの存在は、影響を有さなかった（図１５ｂ）。このことは、ｐ９７トランスサイトーシスが、トランスフェリンレセプターを使用しない、飽和可能なプロセスであることを示す。この仮定は、ｍＡｂ ＯＸ−２６（これは、トランスフェリンレセプターに結合する）が、非特異的ＩｇＧの存在下で測定されたトランスサイトーシスと比較して、ｐ９７トランスサイトーシスを有意には減少させないという事実によって、支持される（図１５ｃ）。

（ｐ９７についての潜在的レセプターとしてのＬＲＰの同定）
本発明者らはまた、３７℃で１時間インキュベートされた、単離されたヒト脳毛細血管への［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みを評価した（図１６ａ）。５０倍モル過剰の非標識ｐ９７は、［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みを６０％阻害した。ヒトラクトフェリンは、［^１２５Ｉ］−ｐ９７取り込みの類似の阻害を引き起こし、一方でヒトホロトランスフェリンは、効果を有さなかった。これらの結果は、ＬＲＰ（これは、ラクトフェリンを結合し、そしてＢＢＣＥＣ単一層を通してラクトフェリンを移送する）もまた、脳毛細血管への［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みおよびｐ９７のトランスサイトーシスに関与することを示す。

ｐ９７の移送におけるＬＲＰの役割をさらに調査するために、トランスサイトーシス実験を、レセプター結合タンパク質（ＲＡＰ）（ＬＲＰを調節するタンパク質シャペロン）の存在下で実施した（図１６ｂ）。組換えＲＡＰ（２５μｇ／ｍｌ）は、ＢＢＣＥＣ単一層を横切る［^１２５Ｉ］−ｐ９７移送の初速度を、５０％より大きく減少させた。さらに、ウシ［^１２５Ｉ］−ラクトフェリンのトランスサイトーシスは、２００倍モル過剰の非標識ｐ９７によって、７５％より大きく阻害される（図１６ｃ）。

図１７は、ＬＲＰリガンドＲＡＰ、アプロチニンおよびＢＳＡの、ｐ９７トランスサイトーシスに対する影響、ならびにｐ９７のラクトフェリントランスサイトーシスに対する影響を、さらに図示する。ＲＡＰによる阻害は、メガリン（ｍｅｇａｌｉｎ）由来のｐ９７と、肝臓において見出されたカイロミクロンレセプターと、肺内皮細胞、ニューロン、星状細胞（ａｔｒｏｃｙｔｅ）および糸球において見出され得る進行したグリケーションの最終生成物に対するレセプターとを区別するが、ＢＳＡによる阻害は、これらを区別しない。

（ＢＢＣＥにおけるｐ９７取り込みの時間経過）
ｐ９７の内在化についての時間経過は図１８に示され、この図は、３０分間および６０分間でのｐ９７の移動、ならびに初期エンドソームにおけるこれらの蓄積を示す。図１９は、ＢＢＢモデルにおけるｐ９７内在化の速度およびトランスサイトーシスを研究するための条件を図示する。図２０は、このような研究の結果を示す。トランスサイトーシスは、１０分間程度で迅速であり、膜結合ｐ９７の８０％が、トランスサイトーシスされた。

（ｐ９７のエンドサイトーシスの経路）
増殖する脳毛細血管内皮細胞に対するＬＲＰへの結合の際に、ＬＤＬは、古典的に、クラスリン依存性経路（ここで、ＬＤＬは、リソソームに指向し、そして分解して、増殖細胞にコレステロールを提供する）によって内在化する。この経路は、フィリピンに感受性である。分化したＢＣＥＣにおいて、ＬＤＬは、トランスサイトーシスされる。証拠は、同じレセプターが両方の経路に関与することを示す（Ｄｅｈｏｕｃｋら、Ｊ．ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ １３８（４）８７７−８８９（１９９７）を参照のこと）。

ｐ９７エンドサイトーシスがクラスリン依存性機構またはクラスリン非依存性機構（すなわち、小胞）に関与した可能性を、ＢＢＣＥにおいて試験した。ｐ９７は、カベオリンよりクラスリンとより類似して、同時局在することが見出された（データは示さない）。ｐ９７がＢＢＢモデルの管腔側から非管腔側へと移動する場合の、ｐ９７およびクラスリンの経細胞局在を、ＢＢＣＥにおいて試験した（図２１）。これらのデータは、ｐ９７とクラスリンとの同時移動を示す。Ａｌｅｘａ標識の効果についてのコントロールとして、ｐ９７およびｐ９７−ａｌｅｘａの挙動を比較した（データは示さない）。ｐ９７−ａｌｅｘａもまた、他の小胞構造体を標識し、ｐ９７およびｐ９７−ａｌｅｘａは、類似の局在を有し、このことは、標識が、ｐ９７の挙動を変化させないことを示した。

エンドサイトーシスに続いて、ｐ９７の移送の運命は、細胞型に依存する。図２２に示されるように、ｐ９７は、脳毛細血管の内側を覆う脳内皮細胞を用いて起こるように、細胞を横切って移送され得るか、そうでなければリソソームに移送され得る。第一の例においては、ｐ９７は、ｐ９７治療剤結合体のような治療剤を、血液脳関門を横切って送達する手段として有用である。第二の例においては、ｐ９７は、治療剤を、細胞内区画（特に、リソソーム）に送達する手段として有用である。この例において、酵素（例えば、リソソーム蓄積症を罹患する患者において欠損する酵素）との結合体が、特に興味深い。

（ＬＲＰリガンドおよびレセプターファミリーの発現）
図２３は、細胞膜に関してのＬＲＰレセプターαおよびβサブユニット、ならびにいくつかのＬＰＲリガンドを例示する。図２５は、種々の細胞型（星状細胞腫、正常な星状細胞および脳毛細管を含む）におけるＬＰＲ／ＬＰＲ１Ｂタンパク質の相対量を示す。対照として、星状細胞および星状細胞腫間のメガリン（ｍｅｇａｌｉｎ）の分布は、図２６に示される。図２７および図２８に示されるように、（ＲＴ−ＰＣＲ）によって決定される場合、星状細胞および星状細胞腫におけるＬＲＰ１Ｂの発現は、星状細胞よりも星状細胞腫において増大する。この結果は、星状細胞腫による、標識されたｐ９７のより多い取り込みと一致する。対照として、そしてメガリンがｐ９７の取り込みに関与しないことの確認において、これらの細胞間でのメガリンの発現パターンは、これらの細胞についてのｐ９７の取り込みパターンと全く類似しない（図２６を参照のこと）。図２８は、ｐ９７取り込みとＬＲＰ１Ｂ発現との間の相関をより明確に例示する。

図３２は、ＲＴ−ＰＣＲによる、ＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現を示す。グリア芽細胞腫細胞株において、Ｕ８７ ＬＲＰ、ＬＲＰｌｂ、ＬＤＬおよびＬＲＰ８は、高度に発現される。キュービリン（ｃｕｂｉｌｉｎ）およびＲＡＰは、より低い程度まで発現される。ヒト毛細管において、ＬＲＰ１Ｂ、メガリン、ＬＤＬ、ＬＲＰ８およびＬＲＰは、キュービリンと比較して、高度に発現される。

（ＬＲＰ／ＬＲＰ１Ｂとｐ９７との会合）
図２９は、ＬＲＰ／ＬＲＰ１Ｂが、ｐ９７の存在下で高分子量の解離可能な複合体として移動することを示し、このことは、これら２種の分子の会合を示す。この複合体を還元条件（例えば、β−メルカプトエタノール）に曝すことは、この高分子量複合体からのｐ９７の放出を誘導する（図３０を参照のこと）。ｐ９７は、同様に、グリア芽細胞腫およびヒト脳毛細管との接触の際に、高分子量複合体を形成する（図３１を参照のこと）。

（ヒトグリア芽細胞腫におけるＬＤＬレセプターファミリーメンバーの細胞発現に対するｐ９７の影響）
星状細胞腫細胞および星状細胞によって取り込まれるｐ９７の能力を試験するために、各型の細胞を、^１２５Ｉ ｐ９７と共にインキュベートした。図２４に示されるように、このような細胞におけるｐ９７の特異的取り込みは、星状細胞よりも星状細胞腫細胞において大きく増加した。図２４に示されるように、星状細胞腫細胞は、星状細胞よりもかなり高い程度までｐ９７を取り込む。この知見は、抗癌剤へのｐ９７結合体が、グリオームの処置において特に有用であることを示す。図３４は、Ｕ８７細胞におけるＬＲＰおよびＬＲＰ１Ｂの発現に対する、ｐ９７処置およびＲＡＰ処置の影響を示す。ｐ９７は、ＬＲＰ１Ｂの発現を誘導するが、Ｕ−８７細胞の形態学に対して識別可能な影響を有さない（図３３を参照のこと）。図３５は、Ｕ−８７細胞におけるＲＴ−ＰＣＲによって測定される場合の、ＬＲＰＩＢｂ、ＬＲＰ、ＬＤＬ−Ｒ、メガリンおよびキュービリンについてのｐ９７の用量応答効果を示す。ｐ９７は、ＬＲＰ１Ｂレセプターおよびキュービリンレセプターの発現を誘導するが、ＬＲＰの発現もメガリンレセプターの発現も誘導しない。ＲＡＰは、これらのレセプターに対するｐ９７の影響に拮抗するようである。ｐ９７はまた、ＲＴ−ＰＣＲ法によって示されるように、それ自体の発現を誘導するようである（図３６を参照のこと）。図３７および図３８は、ＲＴ−ＰＣＲによって決定される場合の、グリア芽細胞腫Ｕ８７細胞株におけるＬＲＰ１Ｂ、ＬＲＰ、ＬＤＬ−Ｒ、キュービリン、ｐ９７およびメガリンの発現に対する、ｐ９７およびＲＡＰの定量された影響を要約する。

（繊維芽細胞に対するｐ９７の影響）
繊維芽細胞株ＭＧ１３９１を使用して、繊維芽細胞におけるトランスサイトーシスまたはエンドサイトーシスのためのキャリアとしての、ｐ９７および他のＬＲＰリガンド結合体の能力を評価した。図３９は、ＭＧ１３９１細胞におけるＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現を示す。ＲＴ−ＰＣＲによって測定される場合、ＬＲＰ、ＬＤＬ、ならびにより低い程度までＬＲＰ１Ｂおよびキュービリンは、発現される。さらに、ｐ９７は、図４０および図４１において示されるように、ＬＲＰ１Ｂの発現を特に誘導する。

（ヒト内皮細胞およびＢＢＣＥ細胞における、ＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現）
図４２に示されるように、ＬＲＰ、ＬＲＰ１ＢおよびＬＤＬ−ＲならびにＬＲＰ８は、ヒト内皮細胞において高度に発現される。星状細胞の非存在下でのＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現は、大まかにＬＲＰ５の発現と同じである。しかし、星状細胞の存在は、ＢＢＣＥ細胞においてＬＲＰ１ＢおよびＬＲＰ８の発現を誘導する（図４３を参照のこと）。

上記の例は、インビボでの脳のｐ９７取り込みが、ＢＳＡおよびトランスフェリンのような他のタンパク質よりもかなり高いことを示す。ｐ９７のトランスサイトーシスを特徴付けるために本明細書で使用されるＢＢＢのインビトロモデルは、トランスフェリン、ラクトフェリン、低密度リポタンパク質およびインスリンのようなタンパク質について、以前に使用されている（Ｄｅｈｏｕｃｋ，Ｂ．ら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１３８：８７７−８８９（１９９７）、Ｆｉｌｌｅｂｅｅｎ，Ｃ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：７０１１−７０１７（１９９９）；Ｄｅｓｃａｍｐｓ，Ｌ．，Ｄｅｈｏｕｃｋ，Ｍ．Ｐ．、Ｔｏｒｐｉｅｒ，Ｇ．＆ Ｃｅｃｃｈｅｌｌｉ，Ｒ．Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７０：Ｈ１１４９−Ｈ１１５８（１９９６））；Ｆｒａｎｋ，Ｈ．Ｊ．、Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．、Ｍｏｒｒｉｓ，Ｗ．Ｌ．、Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ，Ｒ．Ｇ．＆ Ｃｈｏｉ，Ｔ．Ｂ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ ３５：６５４−６６１（１９８６）を参照のこと）。これらのタンパク質について観察されたように、ｐ９７の経内皮輸送は、エネルギーを必要とし、そして濃度依存的であり、このことは、ｐ９７のレセプター媒介性のエンドサイトーシス機構を示す。さらに、ＢＢＣＥＣの先端部から基底外側表面へのｐ９７の優先的な輸送は、ｐ９７の検出可能な分解なしに観察される。ｐ９７のコンフォメーションはまた、そのトランスサイトーシスのために非常に重要であるようである。なぜなら、熱変性は、このタンパク質の経内皮輸送をかなり低減させたからである。従って、インビトロの結果は、脳における高いｐ９７取り込みについてのインビボの観察を、強力に確認および支持する。

これらの結果は、高い能力を有する、ｐ９７に対する親和性の低いレセプターの存在を示す。ウシトランスフェリンをヒトｐ９７と比較する全ての実験が、異種の系において実施されるので、本発明者らは、ｐ９７レセプターについての結合定数が、ヒトの同種系においてはなおより高いことを予測し得る。ｐ９７は、ヒトトランスフェリンと多くの特性を共有し、そしてトランスフェリンレセプターは、ｐ９７と同じ組織で検出されているので、ｐ９７がトランスフェリンレセプターの代替的リガンドであると推定されている。しかし、本発明者らの結果は、トランスフェリンレセプターに関与する機構以外の機構を強力に支持する。第一に、ｐ９７のトランスサイトーシス、結合および蓄積は、トランスフェリンについてのものよりもかなり高く、このことは、ｐ９７レセプターが、トランスフェリンレセプターについて以前に報告された能力よりもかなり高い能力および以前に報告された親和性よりも低い親和性を有することを示す。第二に、ｐ９７のトランスサイトーシスは、ウシまたはヒトのいずれかのトランスフェリンによって影響を受けず、このことは、ｐ９７が、そのレセプターについてトランスフェリンと競合しないことを示す。第三に、トランスフェリンレセプターに対するｍＡｂ ＯＸ−２６（これは、トランスフェリンの取り込みを阻害することが以前に示されている）は、ｐ９７輸送に対して影響を有さない。ＢＢＣＥＣ単層を使用するトランスサイトーシス実験に加えて、単離されたヒト脳毛細管における未標識ｐ９７による［^１２５Ｉ］−ｐ９７取り込みの競合は、ｐ９７のレセプターの存在を確認した。さらに、ラクトフェリンは、トランスフェリンまたは任意の他の試験したタンパク質よりも、効果的に良好に［^１２５Ｉ］−ｐ９７取り込みを競合し、このことは、ラクトフェリンおよびｐ９７がレセプターを共有することを示す。脳ＥＣにおけるラクトフェリントランスサイトーシスについてのレセプターは、ラージＬＤＬレセプターファミリーのメンバーであるＬＲＰ６である（Ｂｕ，Ｇ．＆ Ｒｅｎｎｋｅ，Ｓ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：２２２１８−２２２４（１９９６）を参照のこと）。ＬＲＰがｐ９７トランスサイトーシスに関与し得るか否かをさらに調査するために、ＲＡＰ（ＬＤＬレセプターファミリーのメンバーに対するリガンドの結合を阻害するタンパク質）の存在下でＢＢＣＥＣ単層を用いて実験を実施した（Ｂｕ，Ｇ．＆ Ｒｅｎｎｋｅ，Ｓ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：２２２１８−２２２４（１９９６）；Ｗｉｌｌｎｏｗ，Ｔ．Ｅ，Ｇｏｌｄｓｔｅｉｎ，Ｊ．Ｌ．、Ｏｒｔｈ，Ｋ．、Ｂｒｏｗｎ，Ｍ．Ｓ．＆ Ｈｅｒｚ，Ｊ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：２６１７２−２６１８０（１９９２）；Ｂｕ，Ｇ．＆ Ｓｃｈｗａｒｔｚ，Ａ．Ｌ．Ｔｒｅｎｄｓ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．８：２７２−２７６（１９９８）；およびＨｅｒｚ，Ｊ．＆ Ｓｔｒｉｃｋｌａｎｄ，Ｄ．Ｋ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１０８：７７９−７８４（２００１）を参照のこと）。

このファミリーの公知のメンバーとしては、ＬＤＬ−Ｒ、ＬＲＰ１Ｂ、メガリン、ＶＬＤＬ−Ｒ、ａｐｏＥレセプター２およびモザイクＬＤＬＲ関連タンパク質（ＬＲ１１）もまた挙げられる（Ｈｕｓｓａｉｎ，Ｍ．Ｍ．Ｆｒｏｎｔ．Ｂｉｏｓｃｉ．６：Ｄ４１７−Ｄ４２８（２００１）；およびＬｉｕ，Ｃ．Ｘ．、Ｌｉ，Ｙ．、Ｏｂｅｒｍｏｅｌｌｅｒ−ＭｃＣｏｒｍｉｃｋ，Ｌ．Ｍ．、Ｓｃｈｗａｒｔｚ，Ａ．Ｌ．＆ Ｂｕ，Ｇ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６：２８８８９−２８８９６（２００１）を参照のこと）。これらのレセプターの中で、メガリンはまた、ラクトフェリンに結合することが公知である（Ｈｕｓｓａｉｎ，Ｍ．Ｍ．Ｆｒｏｎｔ．Ｂｉｏｓｃｉ．６：Ｄ４１７−Ｄ４２８（２００１）；およびＷｉｌｌｎｏｗ ＴＥ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ ３７９：１０２５−１０３１（１９９８）を参照のこと）。しかし、メガリンは、腎臓において主に発現するが、ＬＲＰ発現の主要な部位は、脳である。従って、ＲＡＰによるｐ９７トランスサイトーシスの減少およびｐ９７によるラクトフェリントランスサイトーシスの阻害はまた、ＬＲＰが、ＢＢＣＥＣを横切ってｐ９７を輸送することを示す。

レセプター媒介性エンドサイトーシスを使用して脳へとペプチドを送達するという概念は、血液脳関門（ＢＢＢ）を横切るインスリンの経内皮輸送についての知見と共に最初に記載された。引き続く研究は、ｍＡｂ ＯＸ−２６を用いてトランスフェリンレセプターを標的化することによって、神経ペプチドが、レセプター媒介性エンドサイトーシスを使用してＣＮＳへと送達され得ることを実証した（Ｂｉｃｋｅｌ，Ｕ．、Ｙｏｓｈｉｋａｗａ，Ｔ．＆ Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．４６：２４７−２７９（２００１）およびＰａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．、Ｂｕｃｉａｋ，Ｊ．Ｌ．＆ Ｆｒｉｄｅｎ，Ｐ．Ｍ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．２５９：６６−７０（１９９１）を参照のこと）。このｍＡｂ、特異的リンカーおよび神経向性ペプチドを含むキメラタンパク質の開発は、有意なレベルのこのペプチドの、脳への送達を可能にした（Ｂｉｃｋｅｌ，Ｕ．、Ｙｏｓｈｉｋａｗａ，Ｔ．＆ Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．４６：２４７−２７９（２００１）；Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．、Ｗｕ，Ｄ．，＆ Ｓａｋａｎｅ，Ｔ．Ｐｈａｒｍ．Ｒｅｓ．１５：５７６−５８２（１９９８）；およびＺｈａｎｇ，Ｙ．＆ Ｐａｒｄｒｉｄｇｅ，Ｗ．Ｍ．Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．８８９：４９−５６（２００１）を参照のこと）。さらに、これらの研究において、ｍＡｂ ＯＸ−２６の経内皮輸送はまた、ＢＢＢを横切るヒトトランスフェリンの輸送と類似であることが報告された。本発明者らの結果は、ｐ９７が、少なくともＯＸ−２６が通過するのと同様に、脳血管関門（ＢＢＢ）を横切って通過することを示した。ｐ９７を使用する別の利点は、血清中でのその非常に低い濃度であり（トランスフェリンの１０００００分の１）（Ｊｅｆｆｅｒｉｅｓ，Ｗ．Ａ．ら、Ｂｒａｉｎ Ｒｅｓ．７１２：１２２−１２６（１９９６）およびＫｉｍ，Ｄ．Ｋ．ら、Ｓ Ｎｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ２５：８４−９０（２００１）を参照のこと）、このことは、ＣＮＳへと直接的にｐ９７結合体が送達されることを示す。

これらの結果は、インタクトなｐ９７がＢＢＢの完全性に影響を与えることなく、そしてトランスフェリンにおいて見られた速度よりもかなり高い速度で脳ＥＣを越え得ることを示す。ＢＢＣＥＣ単層におけるＲＡＰによるｐ９７トランスサイトーシスの阻害、およびヒトラクトフェリンによる脳毛細管におけるｐ９７取り込みの競合は、ＬＲＰ（ＬＤＬ−Ｒファミリーのメンバー）が、ｐ９７の経内皮輸送に関与することを示す。これらの結果は、ｐ９７、そしてより一般的にはＬＲＰレセプターおよびＬＲＰ１Ｂレセプターのリガンドが、活性薬剤との結合体化のために好ましいキャリアであり、そしてＬＲＰまたはＬＲＰ１Ｂレセプターを介したこのような結合体の輸送のための好ましいモジュレーターであることを示す。

本明細書の任意の部分において引用された各々の刊行物、特許出願、特許および他の参考文献は、本発明の開示と矛盾しない程度まで、その全体が本明細書中で参考として援用される。

本明細書中に開示される発明および実施例に基づいて、当業者は、本発明の他の実施形態を開発し得る。これらの実施例は、添付の特許請求の範囲を決して限定しないことが意図される。上記の発明を、理解の明確さの目的のために、例示および例としていくらか詳細に記載してきたが、添付の特許請求の範囲の精神及び範囲から逸脱することなく、特定の変化および改変が本発明に対してなされ得ることは、本発明の教示に照らして当業者に容易に明らかである。

ＢＢＣＥＣに対するスクロースの透過係数（Ｐｅ）。スクロースの透過係数（Ｐｅ）を、星状細胞と共存培養させたＢＢＣＥ細胞で被覆したフィルターまたはそれらで被覆していないフィルターを使用して既述された（Ｄｅｈｏｕｃｋら，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，５８：１７９０−１７９７（１９９２））ように計算した。手短に述べると、ＢＢＣＥ細胞で被覆したフィルターまたはそれらで被覆していないフィルターを、３７℃で２時間、ウェル（基底コンパートメント（ｂａｓｏｌａｔｅｒａｌ ｃｏｍｐａｒｔｍｅｎｔ））当たり２ｍｌのＲｉｎｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓを含有する６ウェルのプレートに移した。先端チャンバーの各々について、培養培地を標識した［^１４Ｃ］スクロースを含む１ｍｌのＲｉｎｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓで置き換えた。様々な時点で、別のウェルに挿入物を配置した。実験の最後において、基底コンパートメントにおける放射性トレーサの量を液体シチレーションカウンターで測定した。これらの結果を、時間（分）の関数としてのスクロースクリアランス（μｌ）としてプロットした。ＢＢＣＥ細胞で被覆していないフィルター（ＰＳｆ）でのスクロースの透過およびＢＢＣＥ細胞で被覆したフィルター（ＰＳｔ）を得た。これらの結果を、時間（分）の関数としての［^１４Ｃ］スクロースのクリアランス（μｌ）としてプロットした。ＰＳ＝透過×共培養のフィルター表面積；ＰＳｔ＝フィルターおよび内皮単層の透過；ＰＳｆ＝コラーゲンで被覆したフィルターおよびそのフィルターの底面に配置された星状細胞の透過。内皮単層の透過係数（Ｐｅ）を以下のように計算した： １）クリアランス（μｌ）＝［Ｃ］_Ａ×Ｖ_Ａ／［Ｃ］_Ｌ ［Ｃ］_Ａ＝アブルミナル（Ａｂｌｕｍｉｎａｌ）トレーサ濃度 Ｖ_Ａ＝アブルミナルチャンバーの容積 ［Ｃ］_Ｌ＝ルミナルトレーサ濃度 ２）１／Ｐｅ＝（１／ＰＳｔ−１／ＰＳｆ）／フィルター面積（４．２ｃｍ^２）。 図２は、３７℃にて２時間、予めインキュベートしたＢＢＣＥＣでのスクロース透過性に対するｐ９７（１μｍ）の効果を示す。インビトロＢＢＢモデルのスクロース透過性に対する１μＭでのｐ９７の効果を試験した。スクロースの透過係数（Ｐｅ）を、星状細胞とともに共存培養させたＢＢＣＥ細胞で被覆したフィルターまたはそれらで被覆していないフィルターを使用して既述されたように（Ｄｅｈｏｕｃｋら，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，５８：１７９０−１７９７（１９９２））に計算した。手短に述べると、ＢＢＣＥ細胞で被覆したフィルターまたはそれらで被覆していないフィルターを、３７℃で２時間、ウェル（基底コンパートメント（ｂａｓｏｌａｔｅｒａｌ ｃｏｍｐａｒｔｍｅｎｔ））当たり２ｍｌのＲｉｎｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓを含有する６ウェルのプレートに移した。先端（すなわち、ルミナル）チャンバーの各々について、培養培地を標識した［^１４Ｃ］スクロースを含む１ｍｌのＲｉｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓで置き換えた。様々な時点で、別のウェルに挿入物を配置した。実験の最後において、基底（すなわち、アブルミナル）コンパートメントにおける放射性トレーサの量を液体シチレーションカウンターで測定した。透過係数（Ｐｅ）を、図１に記載のように計算した。 図３は、ウシ脳毛細血管内皮細胞単層におけるｐ９７の結合を示す。ｐ９７結合を、星状細胞からのいかなる妨害をも避けるためにＲｉｎｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓ中で２時間、プレインキュベートしたＢＢＣＥＣで実施した。この結合実験の間、細胞を、［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）およびそれぞれ、濃度７．５μＭの、冷ｐ９７、トランスフェリンまたはラクトフェリンの存在下で、Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ中４℃にて２時間インキュベートした。このインキュベーションの最後で、これらのフィルターを、４ｍｌの冷ＰＢＳを用いて３回、４℃で穏やかに洗浄した。次いで、内皮細胞の結合放射能を、培養挿入物を膜から取り除きそしてガンマカウンタ中でこれを計数することによって決定した。 図４は、ラット脳内皮細胞におけるｐ９７の結合を示す。ｐ９７の結合を、Ｒｉｎｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓ中で２時間プレインキュベートしたＲＢＥ４で実施した。結合実験の間、２４ウェルのマイクロプレート中の細胞を、［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）およびそれぞれ、濃度１０μＭの冷ｐ９７、トランスフェリンまたはラクトフェリンの存在下のＲｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ中で４℃にて２時間インキュベートした。このインキュベーションの最後で、これらの細胞を、４ｍｌの冷ＰＢＳを用いて３回、４℃で穏やかに洗浄した。次いで、ＲＢＥ４細胞をＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００で溶解し、そしてこれらの細胞溶解物の結合放射能を決定した。 図５は、ヒト脳毛細血管におけるｐ９７の結合を示す。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の集積を、単離したヒト脳毛細血管（１００μｇ／アッセイ）中で１時間、３７℃にて測定した。インキュベーション培養物は、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を含み、そして、Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液中で最終濃度１００ｎＭのｐ９７を含有した。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の集積を、濃度５μＭの冷ｐ９７、ホロトランスフェリンまたはホロラクトフェリンの存在下または非存在下で実施した。インキュベーションの後で、この集積を１ｍｌの冷停止溶液（１５０ｍＭ ＮａＣ１，０．１％ＢＳＡおよび５ｍＭ Ｈｅｐｅｓ，ｐＨ７．５）の添加によって停止させた。この懸濁物を、０．４５μＭポアサイズのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ ｆｉｌｔｅｒを通して減圧下で濾過した。このフィルターを、８ｍｌの停止溶液でリンスし、そして、この放射能を計数した。この毛細管に対する放射能の非特異的結合を、インキュベーション培地を添加する前にこの毛細管に氷冷停止溶液を添加することによって決定した。この値を、１時間のインキュベーションの後に得た累積値から差し引いた。これらの結果を、１μｇの脳毛細管当たりの集積した［^１２５Ｉ］−ｐ９７のナノグラム（ｎｇ）数として表現した。 図６は、図５の実験と同じように実施された反復実験であるが、ただし、今回は、β−アミロイドペプチドについてのさらなる競合アッセイを伴った。明らかに、このβ−アミロイドペプチド１〜４０は、ラクトフェリンと一緒のときに、レセプター結合についてｐ９７と競合するが、トランスフェリンと一緒のときには、競合しなかった。 図７は、リガンドｐ９７、ＬｆおよびＴｆを、結合研究の前に加熱するかまたは加熱していない場合の実験の結果を図示している。全ての場合において、結合実験は、結合は４℃または３７℃のいずれかで実施したということを除いて既述のトランスウェル装置において実施した。３７℃の試験において、リガンドを３０分間煮沸して、その後トランスウェルにおける投与前に急冷するような別個の実験を行った。 図８は、ｐ９７トランスサイトーシスが４℃のときよりも３７℃で有意により高かったことを実証している。この結果は、ｐ９７が、（おそらくレセプター媒介性取り込みによる）温度依存的様式で血液脳関門モデルを介するエネルギー依存的プロセスにおいて能動輸送されることを実証する。 図９は、ｐ９７のトランスサイトーシスはまた飽和性現象であり、したがって、血液脳関門のこのモデルにおける特異的なＭＴｆ−レセプタータンパク質にさらに関係することを確認している。これらの実験は、既述されたように実施した。トランスサイトーシスの量の測定は、示した時点で実施した。 図１０は、ｐ９７トランスサイトーシスを妨害するいくつかの因子の能力を評価している。図１０ａ：Ｉ^１２５−ｐ９７のトランスサイトーシスを、冷ｐ９７（５ｍＭ）、Ｌｆ（５ｍＭ）、およびＴｆ（５ｍＭ）の存在下で比較した。図１０ｂ：β−アミロイドタンパク質（５ｍＭ）はまた、標識ｐ９７のトランスサイトーシスを遅延化または低減することができなかった；図１０ｃ：ＲＡＰ（ＬＤＬ−レセプターファミリーの既知のポリペプチドインヒビター）を、細胞（２５μｇ／ｍｌ）に適用した。ＲＡＰは、ｐ９７のトランスサイトーシスを有意に阻害し、したがって、ＬＤＬ−レセプターファミリー（特に、ＭＴｆ−ＲとしてのＬＲＰ１）に直接的に関係する。 図１０は、ｐ９７トランスサイトーシスを妨害するいくつかの因子の能力を評価している。図１０ａ：Ｉ^１２５−ｐ９７のトランスサイトーシスを、冷ｐ９７（５ｍＭ）、Ｌｆ（５ｍＭ）、およびＴｆ（５ｍＭ）の存在下で比較した。図１０ｂ：β−アミロイドタンパク質（５ｍＭ）はまた、標識ｐ９７のトランスサイトーシスを遅延化または低減することができなかった；図１０ｃ：ＲＡＰ（ＬＤＬ−レセプターファミリーの既知のポリペプチドインヒビター）を、細胞（２５μｇ／ｍｌ）に適用した。ＲＡＰは、ｐ９７のトランスサイトーシスを有意に阻害し、したがって、ＬＤＬ−レセプターファミリー（特に、ＭＴｆ−ＲとしてのＬＲＰ１）に直接的に関係する。 図１０は、ｐ９７トランスサイトーシスを妨害するいくつかの因子の能力を評価している。図１０ａ：Ｉ^１２５−ｐ９７のトランスサイトーシスを、冷ｐ９７（５ｍＭ）、Ｌｆ（５ｍＭ）、およびＴｆ（５ｍＭ）の存在下で比較した。図１０ｂ：β−アミロイドタンパク質（５ｍＭ）はまた、標識ｐ９７のトランスサイトーシスを遅延化または低減することができなかった；図１０ｃ：ＲＡＰ（ＬＤＬ−レセプターファミリーの既知のポリペプチドインヒビター）を、細胞（２５μｇ／ｍｌ）に適用した。ＲＡＰは、ｐ９７のトランスサイトーシスを有意に阻害し、したがって、ＬＤＬ−レセプターファミリー（特に、ＭＴｆ−ＲとしてのＬＲＰ１）に直接的に関係する。 図１１は、ｐ９７の集積およびトランスサイトーシスを試験している。図１１ａ：静脈注射１時間後の、［^１２５Ｉ］−ｐ９７、［^１２５Ｉ］−ＢＳＡおよび［^１２５Ｉ］−ホロ−トランスフェリンのｐ９７の集積およびトランスサイトーシスを試験している。脳における放射能を、これらの２つの化合物（ｎ＝３）の間で比較した；図１１ｂ：マウスの実質へのｐ９７およびトランスフェリンの集積。インサイチュの脳の灌流を、右総頸動脈に挿入されたカテーテルを介して最終濃度１０ｎＭでヒト［^１２５Ｉ］−ｐ９７または［^１２５Ｉ］−ホロ−トランスフェリンを用いて実施した。［^１２５Ｉ］−タンパク質の分布体積（ＶＤ）を、右半球の単離および毛細管の除去（ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｄｅｐｌｅｔｉｏｎ）の後で、脳ホモジネート全体（白のバー）、脳の毛細管（黒色のバー）および脳の実質（網掛けしたバー）において得た。結果を、ｐ９７（ｎ＝１０）およびホロ−トランスフェリン（ｎ＝６）について得た；図１１ｃ：ＢＢＣＥＣ単層を介するｐ９７のトランスサイトーシス。トランスサイトーシス実験を、ＢＢＣＥＣ単層について３７℃（白丸）および４℃（黒丸）で実施した。［^１２５Ｉ］−ｐ９７（１ｍｇ／ｍｌ）を、細胞で覆ったフィルターの上側に添加した。１つの代表的な実験を示す（ｎ＝４）；図１１ｄ：ＢＢＣＥＣ単層を介するｐ９７の優先的な輸送。［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）の先端から基底へおよび基底から先端への［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）の輸送を、３７℃で２時間、測定した。実験の終わりにおいて、［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、ＴＣＡ沈殿により各ウェルの底部チャンバーまたは底部チャンバーにおいて評価した（ｎ＝４）。 図１２は、ＢＢＣＥ細胞に対するｐ９７の結合を図示する。図１２ａ：ｐ９７結合実験は、Ｒｉｎｇｅｒ−Ｈｅｐｅｓ溶液中でプレインキュベートするかまたはサポニンで予め処理したＢＢＣＥＣを用いて実施した。次いで、ＢＢＣＥＣを、［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）と共に４℃で２時間インキュベートした。このインキュベーションの最後で、これらのフィルターを、冷ＰＢＳで穏やかに洗浄して、次いで、ＥＣと結合する放射能を定量した；図１２ｂ：［^１２５Ｉ］−ｐ９７の結合をまた、サポニン処理の後に非標識ｐ９７の濃度を増大することによって実施した。これらの結果を、非標識ｐ９７の非存在下で測定した［^１２５Ｉ］−ｐ９７結合のうちのパーセンテージ（百分率）として表現した；図１２ｃ：これらの結果をまた、Ｓｃａｔｃｈａｒｄプロットで変換し、結合ｐ９７の関数として結合ｐ９７／遊離ｐ９７の割合として表現した（ｎ＝５）。 図１３は、ＢＢＣＥＣ単層における、ｐ９７およびトランスフェリンのトランスサイトーシスおよび集積を図示する。図１３ａ：トランスサイトーシス実験を、３７℃（黒色のバー）または４℃（白色のバー）で実施した。［^１２５Ｉ］−ｐ９７またはウシ［^１２５Ｉ］−ホロ−トランスフェリン（１ｍｇ／ｍｌ）を、この細胞で被覆したフィルターの上側に添加した。この実験の最後に、放射性標識タンパク質を、ＴＣＡ沈殿によって各ウェルの底部チャンバーにおいて測定した（ｎ＝４）。コントロールをまた、３０分間（灰色のバー）煮沸して変性した［^１２５Ｉ］−ｐ９７またはウシ［^１２５Ｉ］−ホロ−トランスフェリンを用いて３７℃で実施した（ｎ＝２）；図１３ｂ：生物特異的反応分析を、指定時間の間、ネイティブｐ９７または煮沸したｐ９７を用いて実施した。ＭＡｂ Ｌ２３５（５μｇ）を、ＮＨＳ、ＥＤＣおよびエタノールアミンを組み込んだ標準的な手順を使用してセンサーチップ（ＳＭ５）上に固定した。Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ中に１ｍｇ／ｍｌで希釈したネイティブｐ９７および煮沸した（５〜３０分間）ｐ９７を、冷却してそしてＢＩＡｃｏｒｅに注射した。ネイティブｐ９７および煮沸したｐ９７について得た表面プラズモン共鳴を、時間の関数として（相対単位（ＲＵ）で）プロットした；図１３ｃ：ＢＢＥＣ細胞中への両方のタンパク質の集積を測定した。手短には、いずれかの［^１２５Ｉ］−タンパク質との３７℃（黒色のバー）または４℃（白色のバー）でのインキュベーションの後に、細胞を冷ＰＢＳで４回洗浄した。両方の変性したタンパク質（灰色のバー）の集積をまた、３７℃で測定した。次いで、フィルターを取り除いて、そして、この細胞と結合した放射能を定量した（ｎ＝３）。 図１４は、ｐ９７の安定性およびｐ９７トランスサイトーシス後のＢＢＣＥ単層の完全性を図示する。図１４ａ：トランスサイトーシス実験を、上部コンパートメントへのｐ９７（１ｍｇ／ｍｌ）を添加することによって３７℃および４℃で実施した。実験の最後で、５０μｌの各低部チャンバーからの５０μｌをＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動にために使用した。電気泳動後、このゲルをクマシーブルーで染色した。標準曲線をまた、既知量の組換えｐ９７（０〜２μｇ）で作製した；図１４ｂ：これらのゲルを乾燥しそしてスキャンして３７℃および４℃でＢＢＣＥＣ単層をわたったインタクトなｐ９７を定量した（ｎ＝３）；図１４ｃ：星状細胞と共存培養したＢＢＣＥ細胞単層のスクロース透過性に対するｐ９７の効果。［^１４Ｃ］−スクロースの推移をｐ９７の非存在下（白丸）または（１ｍｇ／ｍｌまでの）存在下（黒丸）でフィルター（ａ）またはＢＢＣＥ細胞で被覆したフィルターを用いて測定した。１つの代表的な実験を示す。これらの結果を、時間（分）の関数としてのスクロースクリアランス（μｌ）としてプロットした；図１４ｄ：スクロース透過係数（Ｐｅ）を、ｐ９７の存在下（＋ｐ９７）または非存在下（−ｐ９７）において決定して、そして、実施例に記載したように計算した（ｎ＝３）。 図１５は、ＢＢＣＥＣ単層における［^１２５Ｉ］−ｐ９７トランスサイトーシスの阻害を示す。図１５ａ：ＥＣの先端側から基底側への［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）の輸送を、２００倍のモル濃度（Ｍ）の過剰量の非標識ｐ９７の存在下（白丸）または存在下（黒丸）において測定した；図１５ｂ：２００倍のモル濃度の過剰量であるヒトまたはウシのいずれかのトランスフェリン（Ｔｆ）およびｐ９７を、ＢＢＣＥＣ単層に関して［^１２５Ｉ］−ｐ９７トランスサイトーシス（ｎ＝５）に基づいて評価した；図１５ｃ：［^１２５Ｉ］−ｐ９７（２５ｎＭ）トランスサイトーシスをまた、濃度５μｇ／ｍｌ（ｎ＝３）のマウスＩｇＧｓ（白丸）またはｍＡｂ ＯＸ−２６（黒丸）の存在下で測定した。 図１６は、リガンド特異性に従ったｐ９７レセプターの同定を図示する。図１６ａ：ヒト脳毛細管への［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みである。単離したヒト脳毛細管への１００ｎＭ（コントロール）での［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みを、５０倍のモル濃度（Ｍ）の過剰量の、非標識ｐ９７、ヒトホロ−トランスフェリンまたはヒトラクトフェリンの存在下にて３７℃で１時間測定した。（^＊Ｐ＜０．５スチューデントのｔ検定（ｎ＝５））；図１６ｂ：ＢＢＣＥＣ単層における［^１２５Ｉ］−ｐ９７のトランスサイトーシスの対するＲＡＰの効果。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の先端から基底の輸送を、ＲＡＰ（２５μｇ／ｍｌ）の存在下（黒丸）または非存在下（白丸）で測定した（ｎ＝５）；図１６ｃ：ｐ９７によるウシ［^１２５Ｉ］−ラクトフェリン輸送の阻害。ウシ［^１２５Ｉ］−ラクトフェリン（５０ｎＭ）のトランスサイトーシスを、非標識ｐ９７（５μＭ）の存在下（黒丸）または非存在下（白丸）で３７℃にて測定した（ｎ＝３）。 図１７は、ｐ９７トランスサイトーシスにおけるＬＲＰの役割の調査を示す。図１７Ａ：［^１２５Ｉ］−ｐ９７の先端−基底輸送を、ＲＡＰ（０．６μＭ）、アポチニン（５μＭ）またはＢＳＡ（５μＭ）の非存在（コントロール）または存在下で３７℃で２時間にわたり測定した。結果は、平均±ＳＤを表している（ＲＡＰについてｎ＝５であり；アプロチニンおよびＢＳＡについてｎ＝３である）。［^１２５Ｉ］−ｐ９７を、ＴＣＡ沈殿によって各ウェルの底部チャンバーで評価した。図１７Ｂ：ｐ９７によるウシ［^１２５Ｉ］−ラクトフェリン輸送の阻害。ウシ［^１２５Ｉ］−ラクトフェリン（５０ｎＭ）のトランスサイトーシスを、２時間、３７℃にて非標識ｐ９７（５μＭ）の存在下または非存在下で測定した。ウシ［^１２５Ｉ]−ラクトフェリンを、ＴＣＡ沈殿によって各ウェルの底部チャンバーまたは頂部チャンバーにおいて評価した。結果は、平均±ＳＤ（ｎ＝６）を表す。ＬＲＰおよびメガリンについての幾つかのリガンドを、図１７Ｃに提示する。 図１８は、ＢＢＣＥ中のｐ９７の取り込みおよび初期エンドソームの集積の時間経過を図示する。 図１９は、このモデルの血液脳関門に通過するｐ９７輸送速度が決定される方法の概略図である。 図２０は、血液脳関門モデルにおけるｐ９７の内在化およびトランスサイトーシスの速度を測定した結果を表す。 図２１は、トランスサイトーシスを変化させるｐ９７およびクラスリンの経細胞性共内在化を示す。 図２２は、ｐ９７化合物またはｐ９７結合体のエンドサイトーシス後の可能な幾つかの経路のうちの以下の２つの概略図である：トランスサイトーシスおよびリソソーム送達。 図２３は、細胞膜に結合するＬＲＰレセプターおよびこのようなＬＲＰレセプターの多数のリガンドの概略図である。 図２４は、ラットの星状細胞および星状細胞腫細胞におけるｐ９７の取り込みを示す。細胞は、５％ＣＯ_２下で３７℃にて、６つのマルチウェルマイクロプレート中にて単層で増殖していた。［^１２５Ｉ］−ｐ９７の取り込みを、星状細胞および星状細胞腫において２時間、３７℃で測定した。インキュベーション培地は、Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液中に［^１２５Ｉ］−ｐ９７および最終濃度５０ｎＭのｐ９７を含んでいた。インキュベーション後に、この細胞単層を、冷Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液で３回洗浄した。Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ ０．１％を添加して［^１２５Ｉ］−ｐ９７取り込みをＴＣＡ沈殿によってＴｒｉｔｏｎ Ｘ−１００可溶性画分中で見積もった。結果は、平均±ＳＤ（ｎ＝３，Ａｓｔｒｏ；ｎ＝６，ＣＴＸおよびＲＧ２；ｎ＝９，Ｃ６）を表す。 図２５は、ＬＲＰ／ＬＲＰ １Ｂの免疫検出を示す。細胞溶解物（２５（ｇ））を非還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥに供してＰＶＤＦメンブレンでエレクロブロットした。ＬＲＰ／ＬＲＰ１Ｂを、以前に記載されたように（Ｂｕら，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１７：１３００２−１３００９，１９９３）、低比重リポタンパク質レセプター関連タンパク質に対して惹起したウサギポリクローナル抗体を使用して免疫検出した（ｎ＝１）。 図２６は、メガリンの免疫検出を示す。細胞溶解物を、非還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥに供してＰＶＤＦメンブレンでエレクロブロットした。メガリンを、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎ ０．１％、３％ ＢＳＡおよび０．０１％ ＮａＮ_３中で１／２５００に希釈したマウスモノクローナル抗体を使用して免疫検出した（ｎ＝１）。 図２７は、ｍＲＮＡ抽出およびＬＲＰ １ＢのＲＴ−ＰＣＲを示す。ＲＮＡ抽出のために、細胞を、８０〜９０％コンフルーエンスにとって最適な培養培地を用いて５％ＣＯ_２下で、３７℃にて７５ｃｍ^２可塑性組織培養フラスコ中で増殖させた。各細胞株からの総ＲＮＡを、実施例に実施例に記載されるように抽出した。増幅ＰＣＲ産物を、２％アガロースゲル上で電気泳動し、そして紫外線下で可視化した（ｎ＝１）。 図２８は、ｐ９７の取り込みとＬＲＰ１Ｂ発現との相関を示す幾つかの実験結果を示す。 ＬＲＰ／ＬＲＰ１Ｂは、ｐ９７の存在下で高分子量の可溶性複合体として移動する。Ｕ−８７細胞を、５％ＣＯ_２下で３７℃にて６マルチウェルマイクロプレート中で単層で増殖した。この細胞単層を、Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液中でｐ９７またはＲＡＰとともに４℃でインキュベートした。インキュベーションの後に、冷Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液で細胞単層を、３回洗浄し、そして、タンパク質を、１ｍＭ ＤＳＳで架橋した。その後、細胞を溶解し、そして、等量のタンパク質（２５μｇ）を、非還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥに供してそしてＰＶＤＦメンブレンでエレクトロブロットした。ＬＲＰ／ＬＲＰ１Ｂを、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎ ０．１％、３％ ＢＳＡおよび０．０１％ ＮａＮ_３で１／５００希釈した、ヒトＬＲＰαサブユニット（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ｉｎｃ．製のクローン８Ｇ１）に対して惹起したマウスマノクローナル抗体を使用して実施例に記載のように免疫検出した（ｎ＝２）。 還元条件は、高分子量複合体からのｐ９７の放出を誘導する。Ｕ−８７細胞を、６マルチウェルのマイクロプレートにおいて、３７℃で５％ＣＯ_２下で単層で増殖させた。細胞単層を、Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液中で［^ｌ２５Ｉ］−ｐ９７と共に４℃でインキュベートした。インキュベーション後、細胞単層を、冷Ｒｉｎｇｅｒ／Ｈｅｐｅｓ溶液で洗浄し、そして［^ｌ２５Ｉ］−ｐ９７架橋を、製造業者のプロトコルに従って、１ｍＭのＤＴＳＰを用いて実施した。その後、細胞を溶解し、そしてタンパク質を、還元条件下または非還元条件下で、ＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した。［^ｌ２５Ｉ］−ｐ９７のオートラジオグラフィーを、ゲル固定および乾燥の後に実施した（ｎ＝２）。 ｐ９７は、高分子量タンパク質複合体として移動する。リガンド結合を、実施例に記載されるように実施した。ヒト脳毛細管に関して、細胞単層と同じプロトコルを用いて、リガンド結合を１００μｇの毛細管に対して実施した。リガンド結合後、細胞を、４℃で３０分間、溶解緩衝液で溶解させた。等量のタンパク質を、非還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した。［^ｌ２５Ｉ］−ｐ９７のオートラジオグラフィーを、ゲル固定および乾燥の後に実施した（ｎ＝２）。 ＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現（ＲＴ−ＰＣＲ）。単離されたヒト毛細管およびＵ８７由来のＲＮＡを、実施例に記載されるように実施した。増幅されたＰＣＲ産物を、２％アガロースゲルで電気泳動し、そして紫外線光下で可視化した（ｎ＝２）。 なし Ｕ−８７細胞における、ｐ９７処理およびＲＡＰ処理の効果。Ａ．細胞（２×１０^５）を、６マルチウェルのマイクロプレート上にプレートし、そして血清を補充した最適な培養培地を用いて、４日間、３７℃にて５％ ＣＯ_２下で増殖させた。処理を、無血清培地中で７２時間実施した。ＲＮＡ単離およびＲＴ−ＰＣＲを、実施例に記載されるように実施した。Ｂ．ＬＲＰ／ＬＲＰ１Ｂを、実施例に記載されるように、細胞溶解物中で免疫検出した。ヒトＬＲＰのα（ａδ）サブユニットに対して惹起されたマウスモノクローナル抗体（Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ｉｎｃ．のクローン８Ｇ１）を、ＴＢＳ−Ｔｗｅｅｎ ０．１％、３％ ＢＳＡおよび０．０１％ ＮａＮ_３中の１／５００希釈で使用した（ｐ９７ 処理についてＮ＝２）、（ＲＡＰ処理についてｎ＝ｌ）。 Ｕ−８７細胞における、ｐ９７処理およびＲＡＰ処理の効果（ＲＴ−ＰＣＲ）。細胞（２×１０^５）を、６マルチウェルのマイクロプレート上にプレートし、そして血清を補充した最適な培養培地を用いて、４日間、３７℃にて５％ ＣＯ_２下で増殖させた。処理を、無血清培地中で７２時間実施した。ＲＮＡ単離およびＲＴ−ＰＣＲを、実施例に記載されるように実施した。増幅されたＰＣＲ産物を、２％アガロースゲルで電気泳動し、そして紫外線光下で可視化した（ｐ９７についてｎ＝２）、（ＲＡＰについてｎ＝ｌ）。 Ｕ−８７細胞における、内因性メラノトランスフェリンに対する、ｐ９７処理およびＲＡＰ処理の効果（ＲＴ−ＰＣＲ）。細胞（２×１０^５）を、６マルチウェルのマイクロプレート上にプレートし、そして血清を補充した最適な培養培地を用いて、４日間、３７℃にて５％ ＣＯ_２下で増殖させた。ｐ９７およびＲＡＰを用いる処理を、無血清培地中で７２時間実施した。ＲＮＡ単離およびＲＴ−ＰＣＲを、実施例に記載されるように実施した。増幅されたＰＣＲ産物を、２％アガロースゲルで電気泳動し、そして紫外線光下で可視化した（ｎ＝１）。 Ｕ−８７細胞における、ｐ９７処理およびＲＡＰ処理の効果。図３７ａは、ＰＣＲ産物のアガロースゲル電気泳動である。増幅されたＰＣＲ産物を、２％アガロースゲルで電気泳動し、そして紫外線光下で可視化した（ｎ＝１）。 Ｕ−８７細胞における、ｐ９７処理およびＲＡＰ処理の効果。増幅されたＰＣＲ産物を、２％アガロースゲルで電気泳動し、そして紫外線光下で可視化した（ｎ＝１）。定量を、ＬＲＰ１Ｂ、ＬＲＰ、ＬＤＬ−Ｒ、キュービリン（ｃｕｂｉｌｉｎ）、内因性ｐ９７およびメガリンのＲＮＡレベルに対する、ｐ９７処理およびＲＡＰ処理の濃度測定によった。結果は、コントロールＵ−８７細胞と処理したＵ−８７細胞との間のＲＮＡレベルの比率として示される。 図３９は、ＭＧ１３９１におけるＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現を示す。ＲＴ−ＰＣＲ。ＲＴ−ＰＣＲを、以下のＬＤＬ−Ｒファミリーメンバーについて実施した：ＬＲＰ、ＬＲＰ１Ｂ、メガリン、ＬＤＬ、ＶＬＤＬ、ＬＲＰ８、ＬＲ１１、ＬＲＰ５およびキュービリン。ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）合成を、ｃＤＮＡ一工程合成キット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、ＵＳＡ）を製造業者のプロトコルに従って使用して、１μｇの総ＲＮＡを用いて実施した（ｌ×の反応ミックス、ＲＮＡ ｌμｇ、０．２μＭの両方のプライマー、ｌμｌのＲＴ／Ｐｌａｔｉｎｕｍ Ｔａｇミックス）。生成したｃＤＮＡを、ＭａｃＶｅｃｔｏｒ ７．０（Ｏｘｆｏｒｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｌｔｄ，Ｏｘｆｏｒｄ，ＵＫ）を用いて作製したプライマーを使用して増幅した。次いで、引き続く全てのアッセイを、線形範囲内のｃＤＮＡ増幅を生成した条件下で実施した。ＲＴ逆転写を、５０℃で３０分間実施した。全てについて、３５または４０サイクルのＰＣＲ増幅を、以下のように実施した：９４℃で３０秒間の変性、６０℃で３０秒間のアニーリング、および７２℃で１分間の伸長。終了段階を、７２℃で５分間実施した。テンプレート以外の全ての成分を含むチューブを、全ての試行において含め、これは、ネガティブコントロールとして作用した。増幅したＰＣＲ産物を、ＴＡＥ（４０ｍＭ Ｔｒｉｓ、３６０ｍＭ 酢酸、１ｍＭ ＥＤＴＡ、１２．５ｆＭ 臭化エチジウム）中の１％アガロースゲルで電気泳動し、そして紫外線光下で可視化し、その後濃度測定分析を行った。 図４０は、上記の方法を使用した、ＭＧ１３９１細胞におけるＬＲＰ１Ｂ、ＬＲＰ、ＬＤＬ−ＲおよびＬＲＰ５の発現に対する、ｐ９７処理の効果を示す。 図４１は、上記の方法を使用した、ＭＧ１３９１細胞におけるＬＲＰ１Ｂ、ＬＲＰ、ＬＤＬ−ＲおよびＬＲＰ５の発現に対する、ｐ９７の効果を示す。 図４２は、ヒト内皮細胞における、ＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現を示す。 図４３は、星状細胞の存在下および非存在下において培養されたＢＢＣＥ細胞における、ＬＤＬレセプターファミリーメンバーの発現を示す。

Claims (23)

1. 血液脳関門を横切る能力を有する化合物を同定するためのインビトロ方法であって、該方法は：
   （ａ）精製されたＬＲＰ１レセプターまたは精製されたＬＲＰ１Ｂレセプターに対する候補化合物の結合を定める工程；
   （ｂ）１または複数の脳細胞に該候補化合物を接触させる工程；および
   （ｃ）該候補化合物が、該脳細胞をトランスサイトーシスを実行するか、または該脳細胞中にエンドサイトーシスを実行する場合、該候補化合物を、血液脳関門を横切る能力を有する化合物と同定する工程、
   を包含する、方法。
2. 血液脳関門を横切る結合体を調製するための方法であって、該方法は：
   （ａ）精製されたＬＲＰ１レセプターまたは精製されたＬＲＰ１Ｂレセプターに対する化合物の結合を検出する工程；および
   （ｂ）該化合物を、神経学的障害の処置、予防または診断において有用である活性剤と結合体化させる工程、
   を包含する、方法。
3. 前記活性剤は、ポリペプチドである、請求項２に記載の方法。
4. メラノトランスフェリン（「ＭＴｆ」）とのメラノトランスフェリン結合体（「ＭＴｆ結合体」）のトランスサイトーシスまたはエンドサイトーシスを調節する化合物を同定するためのインビトロ方法であって、該方法は、以下の工程：
   （ａ）該ＭＴｆまたはＭＴｆ結合体と、ＬＲＰ１もしくはＬＲＰ１Ｂを発現する１または複数の細胞、および候補化合物とを接触させる工程；ならびに
   （ｂ）該候補化合物の存在下または不存在下で該ＭＴｆ結合体のトランスサイトーシスまたはエンドサイトーシスを定める工程；および
   （ｃ）該ＭＴｆまたはＭＴｆ結合体のトランスサイトーシスまたはエンドサイトーシスが、該候補化合物の存在下で変化する場合、該候補化合物をモジュレーターと同定する工程、
   を包含する、方法。
5. 前記モジュレーターは、前記ＭＴｆまたはＭＴｆ結合体のトランスサイトーシスまたはエンドサイトーシスを増大させるものである、請求項４に記載の方法。
6. 前記モジュレーターは、血液脳関門を横切る前記ＭＴｆまたはＭＴｆ結合体の取り込みを増大させるものである、請求項４に記載の方法。
7. 前記候補化合物を、神経学的障害の処置、予防または診断における使用のための医薬の調製に用いる工程をさらに包含する、請求項４，５または６に記載の方法。
8. ＭＴｆ結合体と共に投与するための医薬の調製において前記候補化合物を用いる工程をさらに包含する、請求項４，５または６に記載の方法。
9. 前記化合物が神経学的活性を有する、請求項４に記載の方法。
10. 前記神経学的活性が、神経学的障害の処置、予防または診断である、請求項９に記載の方法。
11. 前記神経学的活性が、脳内へのメラノトランスフェリン結合体化治療剤の取り込みの調節である、請求項１０に記載の使用。
12. 前記方法の少なくとも１つの工程が、高スループットスクリーニングアッセイである、請求項１または４に記載の方法。
13. 前記レセプターが、ＬＲＰ１である、請求項１または４に記載の方法。
14. 前記レセプターが、ＬＲＰ１Ｂである、請求項４に記載の方法。
15. 前記レセプターがヒトのものである、請求項１または４に記載の方法。
16. メラノトランスフェリン媒介性（「ＭＴｆ媒介性」）の鉄の取り込みを調節する化合物を同定する方法であって、該方法は以下の工程：
    鉄に結合したＭＴｆ（「ハロ−ＭＴｆ」）の存在下およびトランスフェリンの非存在下で、表面にＬＲＰ１レセプターまたはＬＲＰ１Ｂレセプターを発現する細胞と該化合物とをインビトロで接触させる工程；ならびに
    該細胞内への鉄の取り込み量を決定する工程、
    を包含する、方法。
17. 前記化合物が、前記細胞内への鉄の取り込み量を増加させる、請求項１６に記載の方法。
18. 前記化合物が、前記細胞内への鉄の取り込み量を減少させる、請求項１６に記載の方法。
19. 前記細胞が、ＬＲＰ１を発現するものである、請求項１６に記載の方法。
20. 前記細胞が、ＬＲＰ１Ｂを発現するものである、請求項１６に記載の方法。
21. 前記ＬＲＰ１またはＬＲＰ１Ｂがヒトのものである、請求項１６に記載の方法。
22. 神経学的障害の処置、予防または診断において使用するための医薬の調製において、前記候補化合物を用いる工程をさらに包含する、請求項１６〜２１のいずれか１項に記載の方法。
23. ＭＴｆ結合体と共に投与するための医薬の調製における前記候補化合物を用いる工程をさらに包含する、請求項１６〜２１のいずれか１項に記載の方法。

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