JP6169316B2 - 改良型細胞組成物およびその作製方法 - Google Patents
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Description
5.1 定義
本明細書で使用する用語「約」は、例えば、言及する数字または値の10%以内を意味する。
細胞、例えば、幹細胞および胎盤幹細胞を含む組成物を作製する改良方法、およびそれによって生成する改良型組成物、例えば、医薬組成物が本明細書で提供される。細胞を含む組成物、例えば、液体形で投与可能な組成物は、例えば、細胞塊、特に裸眼で見える細胞塊(すなわち、マクロの細胞塊)を、個体への医薬組成物の投与の前に除去するとき、レシピエントによって一般に十分許容される。本明細書に記載の細胞、例えば、血液を流出させたヒト産後胎盤由来の幹細胞などの幹細胞、胎盤細胞を含む組成物を作製する方法は、個体に投与するとき実質的に十分許容される組成物を生成する。
(a)細胞、5.5%デキストラン40溶液、および10%HSAを含む溶液を70μMフィルターで濾過して濾過済み細胞含有溶液を生成するステップ、
(b)濾過済み細胞含有溶液を、5.5%デキストラン40、10%HSA、および5%DMSOを含む溶液で、1ミリリットル当たり約1〜50×106、1〜40×106、1〜30×106、1〜20×106、1〜15×106、または1〜10×106個の細胞に希釈するステップ、
(d)前記濾過済み細胞含有溶液中の細胞を凍結保存するステップ、
(e)細胞を解凍するステップ、および
(f)場合によって、濾過済み細胞含有溶液を10%デキストラン40で希釈するステップ
を含む。
(a)複数の細胞を遠心分離にかけて細胞を回収するステップ、
(b)細胞を5.5%デキストラン40に再懸濁するステップ、
(c)細胞を遠心分離にかけて細胞を回収するステップ、
(d)細胞を、10%HSAを含む5.5%デキストラン40溶液に再懸濁して細胞含有溶液を生成するステップ、
(e)細胞含有溶液を、70μMフィルターで濾過して濾過済み細胞含有溶液を生成するステップ、
(f)濾過済み細胞含有溶液を5.5%デキストラン40、10%HSA、および5%DMSOを含む溶液中に、1ミリリットル当たり約1〜50×106、1〜40×106、1〜30×106、1〜20×106、1〜15×106、または1〜10×106個の細胞に希釈するステップ、
(g)前記濾過済み細胞含有溶液中の細胞を凍結保存するステップ、
(h)細胞を解凍するステップ、および
(i)場合によって、濾過済み細胞含有溶液を10%デキストラン40で希釈するステップを含む。
本明細書で提供する組成物、例えば、医薬組成物において有用な単離胎盤多分化能細胞は、組織培養基質と接着し多分化能細胞または幹細胞の特性を有する、胎盤またはその一部分から入手可能である。特定の実施形態では、本明細書で開示する方法において有用な単離胎盤細胞は、非胎盤細胞型に分化する能力を有する。本明細書で開示する方法において有用な単離胎盤細胞は、胎児起源または母方起源のいずれかであってよい(すなわち、それぞれ胎児または母親のいずれかの遺伝子型を有してよい)。単離胎盤細胞および単離胎盤細胞の集団は胎児起源であることが好ましい。本明細書で使用する語句「胎児起源」または「非母方起源」は、単離胎盤細胞または単離胎盤細胞の集団が、胎児と関係がある、すなわち胎児の遺伝子型を有する臍帯または胎盤構造から得られることを示す。本明細書で使用する語句「母方起源」は、細胞または細胞の集団が、母親と関係がある、例えば母方の遺伝子型を有する胎盤構造から得られることを示す。単離胎盤細胞、または単離胎盤細胞を含む細胞の集団は、胎児または母方起源のみである単離胎盤細胞を含むことができ、または胎児と母方両方の起源の単離胎盤細胞の混合集団を含むことができる。単離胎盤細胞、および単離胎盤細胞を含む細胞の集団は、以下で論じる形態、マーカー、および培養特性によって同定および選択することができる。本明細書で記載する方法および組成物中で使用するのに適した単離胎盤細胞は、例えば、その開示全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願公開第2007/0275362号および米国特許第7,468,276号に記載された単離胎盤細胞を含むことができる。
本明細書に記載の単離胎盤細胞は、初代培養または細胞培養において培養すると、組織培養基質、例えば組織培養容器表面(例えば、組織培養プラスチック)、または細胞外マトリクスまたはラミニン、コラーゲン(例えば、天然または変性)、ゼラチン、フィブロネクチン、オルニチン、ビトロネクチンなどのリガンド、および細胞外膜タンパク質(例えば、MATRIGEL(登録商標))(BD Discovery Labware、Bedford、Mass.)でコーティングした組織培養表面と接着する。培養中の単離胎盤細胞は一般に線維芽細胞様、星状の外見を呈し、いくつかの細胞質突起が中心細胞体から広がる。しかしながら、これらの細胞は、同じ条件下で培養した線維芽細胞と形態学的に区別することができる。単離胎盤細胞は、線維芽細胞より多数のこのような突起を示すからである。形態学的に、単離胎盤細胞は、一般に培養中により円形の、または敷石状の形態を呈する造血幹細胞とも区別することができる。
単離胎盤細胞、例えば多分化能細胞または幹細胞、および単離胎盤細胞の集団は、幹細胞、または幹細胞を含む細胞の集団を同定および/または単離するために使用することができる複数のマーカーを発現する。本明細書に記載の単離胎盤細胞、および胎盤細胞集団(すなわち、2つ以上の単離胎盤細胞)は、胎盤、またはその任意の一部分(例えば、羊膜、絨毛膜、胎盤葉など)から直接得られる、胎盤細胞および胎盤細胞含有細胞集団を含む。単離胎盤細胞集団は、培養中の単離胎盤細胞の集団(すなわち、2つ以上)、および容器、例えばバッグ中の集団も含む。本明細書に記載の単離胎盤細胞は、栄養膜細胞、血管芽細胞、血液芽細胞、胚生殖細胞または胚幹細胞ではない。本明細書に記載の方法および組成物に有用である胎盤多分化能細胞は、その開示全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願公開第2007/0275362号、および米国特許第7,045,148号および米国特許第7,468,276号に記載され、かつ以下に記載する。
本明細書で記載する単離胎盤細胞の増殖は、任意の哺乳動物細胞に関して、増殖用に選択する個々の培地に一部分は依存する。最適条件下において、単離胎盤細胞は、典型的には3〜5日で数が倍になる。培養中、本明細書で記載する単離胎盤細胞は、培養支持体、例えば、組織培養容器の表面(例えば、組織培養皿プラスチック、フィブロネクチンコーティングプラスチックなど)に接着し、単層を形成する。
特定の実施形態では、単離胎盤細胞は、CD34+胎盤細胞、例えば造血胎盤細胞である。しかしながら、このようなCD34+細胞は、本明細書で使用する用語「多分化能」によって包含されない。このような細胞は、胎盤組織から、例えば臍帯血を流出させ、灌流させて残留血液を除去した胎盤から入手可能である。特定の実施形態では、CD34+単離胎盤細胞はCD38+である。特定の実施形態では、CD34+単離胎盤細胞はCD38−である。特定の他の実施形態では、CD34+単離胎盤細胞はCD45+である。具体的な実施形態では、単離胎盤細胞はCD34+、CD38−およびCD45+である。
特定の実施形態では、本明細書で提供する方法によって製剤化する本明細書で提供する組成物の細胞は、胎盤灌流液から得られる細胞である。本明細書で使用する「胎盤灌流液から得られる細胞」は、胎盤灌流液から得た、例えば単離した全有核細胞、胎盤灌流液から得た有核細胞のサブセット、または胎盤灌流液から直接得た細胞から培養もしくは増殖した細胞を含む。胎盤灌流液は、胎盤細胞を得るための灌流前に、臍帯血を流出させ、灌流させて残留血液を除去した胎盤から得ることができる。胎盤灌流液は、臍帯血を流出させているが灌流させて残留血液を除去していない胎盤から得ることができる。胎盤灌流液は、臍帯血を流出させず灌流させて残留血液を除去していない胎盤から得ることができる。後の2つの実施形態では、胎盤細胞、例えば、胎盤灌流液からの有核細胞、例えば、胎盤灌流液からの全有核細胞は、胎盤血および/または臍帯血からの有核細胞を含む。胎盤灌流液を得るための方法、および胎盤灌流液から細胞を得るための方法は以下のセクション5.4.4に記載する。
5.4.1 幹細胞回収組成物
本明細書でさらに提供するのは、胎盤細胞、例えば前のセクション5.2に記載した単離胎盤細胞を回収および単離する方法である。一般に、このような細胞は、生理的に許容される溶液、例えば幹細胞回収組成物を使用して哺乳動物胎盤から得る。細胞回収組成物は、「Improved Medium for Collecting Placental Stem Cells and Preserving Organs」という表題の関連米国特許出願公開第2007/0190042号中に詳細に記載される。
一般に、ヒト胎盤は生後のその娩出直後に回収する。好ましい実施形態では、胎盤は、インフォームドコンセント後に患者から、および患者の完全な病歴を得て胎盤と関連付けた後に回収する。病歴は送達後に続くことが好ましい。このような病歴を使用して、胎盤またはそこから採取した幹細胞の二次的使用を調節することができる。例えば、病歴を鑑みて、胎盤に関する幼児のオーダーメイド医療に、または幼児の両親、兄弟または他の親戚に、ヒト胎盤幹細胞を使用することができる。
一実施形態では、器官の一部または全部の物理的破壊によって、哺乳動物胎盤から幹細胞を回収する。例えば、胎盤、またはその一部分は、例えば、破砕する、せん断する、細分する、さいの目に切る、細切れにする、細かく砕くなどすることができる。次いで組織を培養して、単離胎盤細胞の集団を得ることができる。典型的には、胎盤組織は、例えば胎盤細胞回収組成物に使用して破壊する(セクション5.2および以下参照)。
胎盤細胞、例えば胎盤幹細胞または胎盤多分化能細胞は、哺乳動物胎盤の灌流によって得ることもできる。胎盤細胞を得るための哺乳動物胎盤の灌流法は、例えば、それぞれその全体が参照により本明細書に組み込まれる、Hariri、米国特許第7,045,148号および米国特許第7,255,729号、および関連米国特許出願公開第2007/0190042号に開示されている。
単離胎盤細胞、例えば、前のセクション5.3に記載した細胞は、灌流によって、または物理的破壊によって、例えば酵素による消化によって得ようと、Ficoll密度勾配遠心分離によって他の細胞から初期に精製する(すなわち、それらから単離する)ことができる。このような遠心分離は、遠心分離速度などに関する任意の標準的なプロトコルに従うことができる。一実施形態では、例えば、胎盤から回収した細胞を、室温で15分間5000×gでの遠心分離によって灌流液から回収し、これは例えば汚染細胞片および血小板から細胞を分離する。別の実施形態では、胎盤灌流液を約200mlに濃縮し、Ficollで穏やかに層状にし、22℃において20分間約1100×gで遠心分離にかけ、細胞の低密度界面層をさらなる処理用に回収する。
5.5.1 培養培地
単離胎盤細胞、または単離胎盤細胞の集団、またはそこから胎盤幹細胞が増殖する細胞もしくは胎盤組織を使用して、細胞培養を開始する、または接種することができる。細胞は一般に、非コーティング状態、または細胞外マトリクスまたはラミニン、コラーゲン(例えば、天然または変性)、ゼラチン、フィブロネクチン、オルニチン、ビトロネクチンなどのリガンド、および細胞外膜タンパク質(例えば、MATRIGEL(登録商標))(BD Discovery Labware、Bedford、Mass.)でコーティング状態のいずれかの滅菌済み組織培養容器に移す。
単離胎盤細胞、または単離胎盤細胞の集団(例えば、幹細胞または幹細胞の集団と通常in vivoで関係がある胎盤細胞の、少なくとも50%から分離した胎盤細胞または胎盤細胞の集団)を得た後、細胞または細胞の集団をin vitroで増殖および拡大することができる。例えば、単離胎盤細胞の集団を、細胞が70〜90%の集合状態に増殖するのに十分な時間、すなわち細胞およびそれらの子孫が組織培養容器の培養表面積の70〜90%を占めるまで、組織培養容器、例えば皿、フラスコ、マルチウエルプレートなどにおいて培養することができる。
産後胎盤から単離した細胞、例えば、前のセクション5.3に記載した単離胎盤細胞をいくつかの異なる方法で培養して、一組のロット、例えば一組の個別に投与可能な用量の単離胎盤細胞を生成することができる。このようなロットは、例えば、胎盤灌流液由来の細胞から、または酵素により消化した胎盤組織由来の細胞から得ることができる。複数の胎盤から得た数組の胎盤細胞のロットは、例えば長期の貯蔵用に、単離胎盤細胞の塊に並べることができる。一般に、組織培養プラスチック接着性胎盤細胞を胎盤材料の初期培養から得て接種培養物を形成し、それを制御条件下で増殖してほぼ同数の倍化から細胞の集団を形成する。ロットは一胎盤の組織に由来することが好ましいが、複数の胎盤の組織に由来してよい。
単離胎盤細胞、例えば前のセクション5.2に記載した単離胎盤多分化能細胞は、例えば回収中に保存することができる、すなわち、例えば本明細書に記載する方法を使用して、例えば回収中または本明細書に記載する組成物の生成前に、長期の貯蔵を可能にする条件下、または例えばアポトーシスまたは壊死による細胞死を抑制する条件下に置くことができる。
5.7.1 胎盤細胞を含む組成物
本明細書、例えばセクション5.3に記載する胎盤細胞は、本明細書に記載する1つまたは複数の胎盤細胞、例えば胎盤幹細胞または胎盤多分化能細胞を含むことができ、これらの細胞は胎盤、例えばヒト胎盤から単離されている。別の具体的な実施形態では、任意の前述の組成物はマトリクスを含む。より具体的な実施形態では、前記マトリクスは三次元骨格である。別のより具体的な実施形態では、前記マトリクスは、コラーゲン、ゼラチン、ラミニン、フィブロネクチン、ペクチン、オルニチンまたはビトロネクチンを含む。別のより具体的な実施形態では、マトリクスは、羊膜または羊膜由来生体材料である。別のより具体的な実施形態では、前記マトリクスは細胞外膜タンパク質を含む。別のより具体的な実施形態では、前記マトリクスは合成化合物を含む。別のより具体的な実施形態では、前記マトリクスは生物活性化合物を含む。別のより具体的な実施形態では、前記生物活性化合物は、増殖因子、サイトカイン、抗体、または5,000ダルトン未満の有機分子である。
単離胎盤細胞の集団、または単離胎盤細胞を含む細胞の集団は、医薬組成物内に含有される、またはその構成成分である。単離胎盤細胞は、個体に容易に投与可能である形、例えば、医学用途に適した容器内に含有される胎盤灌流液細胞または単離胎盤細胞に調製することができる。このような容器は、例えば、シリンジ、滅菌済みプラスチックバッグ、フラスコ、ジャー、またはそこから胎盤幹細胞集団を容易に分配することができる他の容器であってよい。例えば容器は、レシピエントへの液体の静脈内投与に適した、血液バッグ、または他のプラスチック製の、医学的に許容されるバッグであってよい。特定の実施形態では、容器は単離胎盤細胞集団の凍結保存を可能にする容器である。
本明細書で提供する組成物の特定の実施形態では、単離胎盤細胞はCD34+胎盤幹細胞、例えば造血胎盤細胞または前駆細胞である。このような細胞は、胎盤組織から、例えば臍帯血を流出させ、灌流させて残留血液を除去した胎盤から入手可能である。特定の実施形態では、CD34+胎盤幹細胞はCD38+である。特定の実施形態では、CD34+単離胎盤幹細胞はCD38−である。特定の他の実施形態では、CD34+単離胎盤細胞はCD45+である。具体的な実施形態では、単離胎盤細胞はCD34+、CD38−およびCD45+である。特定の実施形態では、細胞は造血細胞である。より具体的な実施形態では、胎盤CD34+細胞は造血細胞である。特定の実施形態では、CD34+細胞または造血細胞は胎盤灌流液から得る。特定の実施形態では、CD34+細胞または造血細胞は、胎盤組織の酵素による消化または物理的破壊によって得る。CD34+細胞および造血細胞は、1つの胎盤から、または2つ以上の胎盤から得ることができる。
哺乳動物胎盤細胞は、増殖促進遺伝子、すなわち適切な条件下で、増殖促進タンパク質の生成および/または活性が外部因子により制御可能であるように、トランスフェクト細胞の増殖を促進するタンパク質をコードする遺伝子を含有する、任意の適切なベクターを用いたトランスフェクションによって、条件付きで不死化することができる。好ましい実施形態では、増殖促進遺伝子は、v−myc、N−myc、c−myc、p53、SV40高分子T抗原、ポリオーマ高分子T抗原、E1aアデノウイルスまたはヒトパピローマウイルスのE7タンパク質だけには限られないが、これらなどの癌遺伝子である。
別の態様では、本発明の単離胎盤細胞含有組成物の生成および/または投与用のキットが本明細書でさらに提供される。
この実施例は、ヒトまたは動物に投与するための、均質で、高い生存能力の単離胎盤細胞を生成するための、凍結保存前後のヒトCD34−、CD10+、CD105+、CD200+単離胎盤細胞の製剤化を実証する。生成する組成物は、解凍後少なくとも4時間にわたり高い生存能力を示す単離胎盤細胞を含み、マクロの細胞塊は含まない。マウスの急性投薬試験は、NOD/SCIDマウスが、(呼吸困難、循環、および運動失調によって示される)いかなる心臓または肺毒性もなく、静脈内注入投与により以下に記載する最終製剤を使用して、マウス当たり少なくとも150万個の細胞(1kg当たり約7500万個の細胞、20グラムの平均重量を想定)の最大用量、および皮下投与により1kg当たり最大2億5000万個の細胞に耐性があったことを実証し、以前の製剤に優る改良点を実証した。以下の実施例は、特定の表面マーカーを発現する単離胎盤細胞の製剤を記載するが、本明細書に示す結果は、これらの方法および製剤が、他の細胞、例えば、異なる表面マーカーを発現する哺乳動物細胞と共に使用することができ、それと適合性があることを示す。
細胞塊(凝集体)を、マクロ細胞塊またはミクロ細胞塊として分類した。マクロ細胞塊およびミクロ細胞塊は、存在した場合、以下の手順に従い同定した。
氷の小片のみが容器中に残るまで、細胞を37℃の水浴中において容器中で解凍した。16ゲージのニードルを備えるシリンジを使用して容器から細胞を取り出し、細胞は容器から50mLのコニカルチューブに分配した。マクロ細胞塊の有無は目視によって評価した。
細胞を計数して細胞濃度を決定した。次いで細胞を10%デキストラン40で4×106個の細胞/mlに希釈し、50μLの細胞、40μLの10%デキストラン40、および10μLの40μMの測定ビーズ溶液を1.7mLのマイクロ遠心分離チューブに加えた。チューブの中身を穏やかに混合した。10μLの混合サンプルをスライドガラス上に置き、カバースリップで覆った。3個以上の細胞を含む全てのミクロ細胞塊を計数した。
前述の解凍後製剤をマウスの生体内分布パイロット試験において施用した。マクロの細胞塊は解凍後の細胞調製中に、特にPlasmalyteを加えた後に観察した。この細胞調製によって、それぞれ50万個の細胞の二回反復静脈内注入によりマウス(約20g)当たり100万個の細胞の用量で、急性肺毒性を観察した。この2つの観察は、胎盤細胞製剤のさらなる調査を促した。
細胞処理の凍結前の段階においても細胞塊を観察した。凍結培地、凍結細胞密度および懸濁濾過ステップを試験して、凍結前に細胞凝集体を低減および/または排除した。
前述の解凍後製剤におけるデキストラン40の成功に基づいて、凍結培地としてのPlasmalyteとデキストラン40を比較した。ロット3からの細胞を、PlasmalyteA+10%HSA+5%DMSO中、または5%デキストラン40+10%HSA+5%DMSO中のいずれかに1mL当たり1700万個の細胞の濃度で凍結した。細胞塊の存在は以下のように評価した。
マクロ細胞塊を排除しミクロ細胞塊を最小にするために、細胞密度および凍結前濾過を以下のように調べた。
1.解凍後のマクロの細胞塊形成なし
5ロットの胎盤細胞を前述の製剤化法を使用して生成した(以下に記載したロット11およびロット12を含む)。解凍後のマクロの細胞塊は5ロットのいずれにおいても観察されず、ミクロ細胞塊の数は依然として少なかった。
胎盤細胞の表現型は改良型製剤によって影響を受けなかった。製剤中の90%を超える細胞が依然としてCD10+、CD34−、CD105+およびCD200+であった。
ロット12の細胞はマウスの生体内分布試験に使用した。前述の製剤中の胎盤細胞を、単回および/または反復尾静脈注射として、オスとメス両方のNOD−SCIDまたはオスのC57BL/10SgSnAi−Rag2(tmi)γc(tmi)マウスに投与した。マウスは治療後第4、14、28または47日で屠殺し、肺、肝臓、心臓、腎臓、脾臓、副腎、骨髄、および脳のサンプルを処理し、hTERTがヒトテロメラーゼ逆転写酵素遺伝子である、hTERTのDNA配列の存在に関してQ−PCRによって分析した。静脈内投与後、ヒトDNAを、投薬投与後第4日に屠殺したマウス中の肺、脳、心臓および/または肝臓のサンプルから単離した全DNA中で検出した。最高レベルのDNAは肺中で検出した。マウスは、いかなる心臓または肺毒性もなく、静脈内注入による1kg当たり2500万〜1億個の細胞の投与に耐えることができた。ロット11はマウスの発癌性試験に使用した。マウスには副作用を伴わずに1kg当たり最大2億5000万個の細胞を皮下(SC)投与した。
この実施例は、凍結保存後でさえ、ヒトまたは動物に投与するのに適した、均質で、高い生存能力の細胞を示す、ヒト多分化能組織培養プラスチック接着性CD34−、CD10+、CD105+、CD200+胎盤細胞の製剤化を実証する。製剤の細胞は、静脈内(intravenous)マウスモデルにおいて、形成される凝集体の量の平均400倍の低下、および以前の製剤より約3倍改良された改良性最大耐量(MTD)を示す(データ示さず)。以下の実施例は、特定の表面マーカーを発現する単離胎盤細胞の製剤を記載するが、本明細書に示す結果は、これらの方法および製剤が他の細胞、例えば、異なる表面マーカーを発現する哺乳動物細胞とともに使用することができ、また、当該哺乳動物細胞と適合性があることを示す。
この実施例は、HSA、デキストラン40、およびDMSOを含む医薬製剤のさらなる特徴付けを与える。以下に記載する1つまたは複数の実験中で使用する方法は以下の通りである。
この実施例は、細胞凝集、細胞生存能力および回収率、ならびに細胞表現型および機能に対する、HSA、デキストラン、およびDMSOの濃度の変化による影響、ならびにデキストランとHSAの比の変化による影響を記載する。
細胞製剤に関する3成分(HSA、デキストラン40およびDMSO)の解空間を、図1中の三角図に示す条件で調べた。実験条件は、2軸、一方はデキストラン:HSA比を一定に保ちながら異なる割合(%)のDMSOを試験し(以下の製剤1〜4を参照)、他方はDMSOの割合(%)を一定に保ちながらデキストラン:HSAの比を変えて選択した(以下の製剤3、5〜8を参照)。
約1200万個の凍結保存CD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤多分化能細胞を、Nunc(商標)10−tray Cell Factoriesにおいて、以下の製剤のいずれか1つで、約1.2×108個の細胞に増殖した。細胞は0.25%トリプシン/EDTAを用いて室温で10分間のインキュベーションによって採取した。解離した細胞は、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中に250mLの2%ウシ胎児血清(FBS)を含有する500mL遠心分離チューブに移した。次いで細胞を、Sorvall RC3BP遠心分離において、500mLチューブ中で1040RPMにおいて遠心分離にかけた。細胞は0.9%生理食塩水/5%デキストラン40溶液に再懸濁した。次いで細胞を10分間1420RPMにおいて遠心分離にかけ、以下の8製剤(デキストラン:HSA比は製剤5〜8に関して「25%HSAの体積分率」(VF HSA)の単位で示す)の1つの10mLに懸濁した。
製剤1:20%DMSO、8.5%HSA、4.6%デキストラン40
製剤2:10%DMSO、9.5%HSA、5.2%デキストラン40
製剤3:5%DMSO、10%HSA、5.5%デキストラン40(VF HSA=0.4)(対照製剤)
製剤4:0%DMSO、10.5%HSA、5.8%デキストラン40
製剤5:5%DMSO、0%HSA、9.5%デキストラン40(VF HSA=0)
製剤6:5%DMSO、3.125%HSA、8.25%デキストラン40(VF HSA=0.125)
製剤7:5%DMSO、16.88%HSA、2.75%デキストラン40(VF HSA=0.675)
製剤8:5%DMSO、23.75%HSA、0%デキストラン40(VF HSA=0.95)
細胞凝集
DMSOの割合(%)を、例えば0〜20パーセントで変えた場合(製剤1〜4)、図2中に示すように、細胞凝集に対する影響は全く観察されなかった。全DMSO条件が、5%DMSO、5.5%デキストラン40および10%HSAを含む対照製剤に関して観察した範囲内の凝集レベルを示した。HSAおよびデキストラン濃度も一定5%DMSO濃度で変え(図3)、条件はHSAなし(HSA体積分率=0)〜デキストランなし(HSA体積分率=0.95)の範囲であった。0.125〜0.95の25%HSA(それぞれ、最終濃度3.125%〜23.75%のHSA)の体積分率にわたるFRA値は、最小の凝集を示した。HSAの存在下で観察した凝集のレベルは、5%DMSO、5.5%デキストラン40および10%HSAを含む対照製剤以下であった。
異なる割合(%)のDMSO(0、5、10および20%)にわたる解凍後の生存率(図4)および解凍後の回収率(図5)を、Vi−Cell自動細胞計数器を使用しトリパンブルー色素排除試験によって測定して、それぞれの製剤の凍結保護能力を評価した。解凍後の生存率はそれぞれ0%、5%および10%のDMSOを含む製剤で90%を超え、最大値は5%のDMSOで観察し、一方生存率は20%のDMSOを含む製剤で75%未満であった。培養再建(culture reestablishment)はMTSアッセイによって測定した。培養再建は5%のDMSOで最大であったことを観察した(図6)。
細胞のCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型を維持する能力を、フローサイトメトリーによって異なる割合(%)の成分について試験した。製剤2(10%DMSO、9.5%HSA、5.2%デキストラン40)、製剤5(5%DMSO、0%HSA、9.5%デキストラン40)、製剤6(5%DMSO、3.13%HSA、8.25%デキストラン40)および製剤7(5%DMSO、16.88%HSA、2.75%デキストラン40)、および対照製剤3中に製剤化した細胞は、この表現型をほぼ維持しており、80.3%と84.5%の間のCD105+/CD200+値を有していた。さらに、CD10+/CD34−の発現はそれぞれの製剤に関して95%を超えていた。おそらく残骸がフローサイトメトリーアッセイに影響を与えたため、条件1、4および8は細胞の物理的特性の変化を示した。
0〜20%の範囲の濃度のDMSOを含む製剤は、5%DMSO、10%HSA、および5.5%デキストラン40を含む対照製剤に関して観察したレベルと同程度の細胞凝集のレベルを示す。しかしながら、20%のDMSOを含む製剤に細胞を凍結保存すると細胞生存率は低下し、0%のDMSO中に凍結した細胞は、5%のDMSO中に凍結した細胞と比較して、有意に増大したアポトーシスを解凍後に示した。5%および10%のDMSOを含む製剤に関して、CD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型の感知され得る劣化はなかった。したがって、前述の結果は、5%〜10%のDMSOを含む製剤の使用が、解凍後の生存率を維持するのに好ましいことを実証する。
この実施例は、細胞生存能力、CD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型、細胞凝集、および細胞の免疫抑制機能に対する、細胞濃度、例えば、1〜40×106個の細胞/mLの範囲の凍結細胞密度の影響を記載する。
CD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤幹細胞を3日間培養し、採取し、遠心分離にかけ、5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSAを含む製剤に約3.5×107個の細胞/mLの濃度まで再懸濁し、70μmフィルターで濾過した。濾過後細胞を前述の製剤に連続希釈して、滅菌済みバッグ中に、以下の細胞密度、1×106個の細胞/mL、7.5×106個の細胞/mL、15×106個の細胞/mL、および20×106個の細胞/mLを含む細胞サンプルを作製した。細胞を別個に採取して、4.0×107個の細胞/mLを含む別個の細胞サンプルを作製した。4.0×107個の細胞/mLサンプルの細胞を、5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSAを含む5mL製剤に約4.6×107個の細胞/mLの濃度まで再懸濁し、70μmフィルターで濾過し、前述の製剤を使用して20mLバッグ中に4.0×107個の細胞/mLまで希釈した。4.0×107個の細胞/mLサンプルの1つの20mLバッグ、1×106個の細胞/mL、7.5×106個の細胞/mL、15×106個の細胞/mL、および20×106個の細胞/mLサンプルの二連の20mLバッグ、およびそれぞれのサンプルの5本の280μLバイアルを、速度制御フリーザーを使用して−70℃に凍結した。これらのサンプルを後に解凍し、分析して(1)細胞計数、(2)生存率、(3)表現型、(4)細胞凝集、および(5)効能を含めた様々な細胞特性に対する凍結濃度の影響を決定した。
細胞計数/生存率
それぞれの解凍バッグから1〜2個の1mLサンプルを、Vi−Cell細胞生存能力分析装置(Beckman Coulter、Fullerton、California)を使用して、製造者の指示に従い生存細胞計数および生存率決定のために採取した。平均生存率は、約97%で、全ての条件に関して一定状態であった。生存細胞計数は、初期凍結濃度に対応した(以下の表9参照)。
細胞のCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型を維持する能力を、フローサイトメトリーによって異なる細胞密度にわたり試験した。表10中に示すように、表現型は異なる凍結濃度間で変わらない。全ての条件に関して、CD200+/CD105+の発現は約86%で維持され、CD34−/CD10+の発現は約99%で維持された。
それぞれの条件の再現を濾過保持アッセイによって分析して、異なる凍結濃度における細胞凝集の程度を決定した(図11)。二連のアッセイを1×106個の細胞/mL、7.5×106個の細胞/mL、15×106個の細胞/mL、および20×106個の細胞/mLサンプルについて実施した。1つの細胞サンプルは40×106個の細胞/mLサンプルで二連でアッセイした。40×106個の細胞/mLサンプルは、試験した全細胞密度に関して最高の細胞凝集シグナルをもたらした。全ての他のサンプルは、5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSA中に7.5×106個の細胞/mLで事前に凍結保存した対照サンプルを用いて観察した凝集の量以下であった。
それぞれの条件からのバイアルを混合白血球反応(MLR)およびビーズT細胞反応(BTR)分析に使用して、CD4+T細胞およびCD8+T細胞の増殖の抑制により測定して、様々な凍結細胞密度での細胞の免疫調節性を評価した。MLRの結果は、15×106個の細胞/mLおよび40×106個の細胞/mLでCD4およびCD8の抑制の低下を示したが、20×106個の細胞/mLでの抑制は、1×106個の細胞/mLおよび7.5×106個の細胞/mLで観察した抑制と同程度であった。しかしながらBTRの結果は、20×106個の細胞/mLおよび40×106個の細胞/mLでCD4およびCD8抑制の低下を示す。
前述の結果は、細胞の生存率およびCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型は、凍結細胞密度の作用として変わらないことを実証する。しかしながら、20×106個の細胞/mLの密度で凍結保存した細胞は、細胞凝集の可変的増大および免疫抑制活性の可変的低下を実証し、一方40×106個の細胞/mLの密度で凍結保存した細胞は、細胞凝集の不変的増大および免疫抑制活性の不変的低下を示した。このように、細胞生存率またはCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型を示す細胞数の感知され得る低下なしに、最大、例えば40×106個の細胞/mLの密度で本明細書に記載する製剤中に細胞を製剤化することはできるが、1.0〜15×106個の細胞/mLの範囲の凍結細胞密度が、解凍時の細胞凝集を最小にするのに好ましい。
この実施例は、細胞凝集、生存率、回収率、CD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型および機能に対する、様々な分子量のデキストラン、例えば、デキストラン1(MW=1000)、デキストラン40(MW=40,000)およびデキストラン70(MW=70,000)の影響を記載する。
1200万個の凍結保存CD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤多分化能細胞を、Nunc(商標)10−tray Cell Factoriesにおいて、以下の製剤のいずれか1つで約1.2×108個の細胞に増殖した。細胞は0.25%トリプシン/EDTAを用いて室温で10分間のインキュベーションによって採取した。解離した細胞は、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中に250mLの2%ウシ胎児血清(FBS)を含有する500mL遠心分離チューブに移した。次いで細胞を、Sorvall RC3BP遠心分離において500mLチューブ中で1040RPMにおいて遠心分離にかけた。細胞は0.9%生理食塩水/5%デキストラン40溶液に再懸濁した。次いで細胞を10分間1420RPMにおいて遠心分離にかけ、以下の10mLの製剤に懸濁した。
製剤1:5%DMSO、5.5%デキストラン40(Hospira、Lake Forest、Illinois)、10%HSA(対照)
製剤2:5%DMSO、5.5%デキストラン1(Pharmacosmos)、10%HSA
製剤3:5%DMSO、5.5%デキストラン40(Pharmacosmos)、10%HSA
製剤4:5%DMSO、5.5%デキストラン70(Pharmacosmos)、10%HSA
細胞凝集
それぞれの製剤内の細胞凝集を、濾過保持アッセイを使用して評価した。製剤2(デキストラン1)、製剤3(デキストラン40)、および製剤4(デキストラン70)は、5%DMSO、5.5%デキストラン40、および10%HSAを含む対照製剤以下の細胞凝集率を実証した(図13)。
デキストラン1、デキストラン40、またはデキストラン70を含むサンプルに関する解凍後の生存率は96.0%〜97.7%の生存率の範囲であった(図14)。同様に、解凍後の回収率は対照製剤のそれと同程度であり、細胞の生存率は対照製剤の92%〜109%の範囲であった(図15)。
細胞のCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型を維持する能力を、フローサイトメトリーによって異なるデキストラン分子量にわたり試験し、細胞の免疫抑制能力はBTRアッセイにおいて試験した。試験した全ての製剤にわたるCD200+/CD105+の発現は89.1%〜91.6%の範囲であり、CD34−/CD10+の発現は全ての条件に関して95%を超えた(図16)。さらに、異なるデキストラン分子量にわたるCD4+およびCD8+T細胞の抑制は、デキストラン40を含む標準対照製剤の4回の異なる反復実験から誘導した期待値の1標準偏差の範囲内であった(図17)。
これらの結果は、細胞凝集、生存率、回収率、表現型または免疫抑制能力に影響を与えずに、本明細書に記載する製剤において、デキストラン1またはデキストラン70をデキストラン40と置換することができることを実証する。
この実施例は、細胞の生存率および増殖に対する、細胞製剤中のデキストラン40以外の多糖の影響を記載する。
1200万個の凍結保存CD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤多分化能細胞を、Nunc(商標)10−tray Cell Factoriesにおいて、以下の製剤のいずれか1つで約1.2×108個の細胞に増殖した。細胞は0.25%トリプシン/EDTAを用いて室温で10分間のインキュベーションによって採取した。解離した細胞は、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中に250mLの2%ウシ胎児血清(FBS)を含有する500mL遠心分離チューブに移した。次いで細胞を、Sorvall RC3BP遠心分離において500mLチューブ中で1040RPMにおいて遠心分離にかけた。細胞は0.9%生理食塩水/5%デキストラン40溶液に再懸濁した。次いで細胞を10分間1420RPMにおいて遠心分離にかけ、以下の10mLの製剤に懸濁した。
製剤1:5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSA(対照)
製剤2:5%DMSO、5.5%マルトデキストリン、10%HSA
製剤3:5%DMSO、5.5%スクロース、10%HSA
製剤4:5%DMSO、5.5%トレハロース、10%HSA
製剤5:5%DMSO、55USP/mLヘパリン、10%HSA
製剤6:5%DMSO、3.3%ヘタスターチ、10%HSA
製剤7:5%DMSO、5.5%グリコーゲン、10%HSA
細胞凝集
それぞれの製剤内の細胞凝集を、濾過保持アッセイを使用して評価した。製剤2〜7は、5%DMSO、5.5%デキストラン40、および10%HSAを含む対照製剤以下の細胞凝集をもたらすと決定した(図18)。トレハロースを含む製剤4、ヘパリンを含む製剤5、グリコーゲンを含む製剤7は、実質的に対照製剤未満の細胞凝集率を実証した。
解凍後の生存率、生存細胞の回収率および細胞の大きさのデータを製剤1〜7のそれぞれにわたり評価して、製剤の凍結保護能力を評価した。解凍後の生存率は、トリパンブルー色素排除試験用Vi−Cell細胞生存能力分析装置(Beckman Coulter、Fullerton、California)によって評価した。解凍後の生存率は95.2%〜98.6%の範囲であり、スクロースおよびグリコーゲンが範囲の下端であった(図19)。対照デキストラン製剤は細胞の98%の生存率をもたらした。解凍後の生存細胞の回収率を計算して、凍結/解凍プロセスにわたる細胞消失を理解し、値は異なる多糖にわたり84%〜115%の範囲であった(図20)。
細胞のCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型を維持する能力を、フローサイトメトリーによって異なる多糖にわたり試験した。製剤2〜4および6に製剤化した細胞は対照製剤1とほぼ同様にこの表現型を維持し、89.4%〜92.9%のCD105+/CD200+であった。CD10+/CD34−の発現はそれぞれの製剤に関して95%を超えた。ヘパリン中に凍結した細胞の中で、85.4%がCD105+/CD200+の表現型を維持した(図21)。
細胞凝集、解凍後の生存率、解凍後の細胞回収率および表現型の維持に関して、マルトデキストリン、トレハロースおよびヘタスターチを含む製剤の使用は、デキストラン40製剤の使用とほぼ同じ特性を有する胎盤細胞集団をもたらした。このように、スクロース、ヘパリンまたはグリコーゲンを含む製剤を使用して、CD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤幹細胞を製剤化することはできるが、デキストラン40、マルトデキストリン、トレハロースまたはヘタスターチを含む製剤の使用が好ましい。
この実施例は、5.5%デキストラン40、10%HSAおよび5%DMSO製剤において、ヒト血清アルブミン濃度を低減することができること、およびHSAはウシ血清アルブミンまたはウシ胎児血清に置き換えることができることを実証する。
1200万個の凍結保存CD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤多分化能細胞を、Nunc(商標)10−tray Cell Factoriesにおいて、以下の製剤のいずれか1つで約1.2×108個の細胞に増殖した。細胞は0.25%トリプシン/EDTAを用いて室温で10分間のインキュベーションによって採取した。解離した細胞は、ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中に250mLの2%ウシ胎児血清(FBS)を含有する500mL遠心分離チューブに移した。次いで細胞を、Sorvall RC3BP遠心分離において500mLチューブ中で1040RPMにおいて遠心分離にかけた。細胞は0.9%生理食塩水/5%デキストラン40溶液に再懸濁した。次いで細胞を10分間1420RPMにおいて遠心分離にかけ、以下の10mLの製剤に懸濁した。
製剤1:5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSA(対照)
製剤2:5%DMSO、5.5%デキストラン40、4%HSA
製剤3:5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%BSA
製剤4:5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%FBS
細胞凝集
濾過保持アッセイ(FRA)によって測定した細胞凝集は、全条件に関して一平方ミリメートル当たり100ピクセル以下であった(図23)。しかしながら、10%HSAおよび10%BSAは、4%HSAおよび10%FBSより明らかに少ない凝集をもたらしたようである。
細胞のCD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型を維持する能力を、フローサイトメトリーによって異なる製剤にわたり試験した。(図26および27)。製剤2〜4に製剤化した細胞は対照10%HSA製剤とほぼ同様にこの表現型を維持し、値は試験した細胞の88.2%〜93.5%であった。CD10+/CD34−の発現はそれぞれの製剤に関して95%を超えた。
前述の結果は、細胞生存能力の感知され得る消失、解凍後の細胞回収率、CD10+、CD34−、CD105+、CD200+表現型の劣化、または免疫抑制活性なしで、4%HSA、10%BSA、または10%FBSを10%HSAに置き換えることができることを実証する。したがって、少なくとも約4%〜約10%のHSA、BSAおよび/またはFBSの範囲は、本明細書に記載する製剤に特に適している。
この実施例は、骨髄由来間葉系幹細胞およびナチュラルキラー細胞を、胎盤多分化能細胞と同じ形式で製剤化することができることを実証する。したがって、この実施例は、胎盤多分化能細胞以外の他の細胞を、本明細書で示す形式で製剤化することができることを示す。
骨髄由来間葉系幹細胞(BMMSC)およびナチュラルキラー(NK)細胞を増殖させ、以下の製剤を使用して採取した。
F1:3日間細胞を培養し、次に回収し、細胞を5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSAに再懸濁し、細胞を70μmフィルターで濾過し、約7.5×106個の細胞/mLに細胞を凍結保存したもの。
F2:4日間細胞を培養し、次に回収し、細胞を5%DMSOおよび10%HSAを含むPlasmalyteAに再懸濁したもの。
生存率
解凍後サンプルを使用して、異なる条件下で凍結した細胞の生存率を決定した。BMMSCおよびNK細胞の生存率は、凍結条件によって有意に影響を受けなかった。
NKマーカーをアッセイして、NK表現型(CD3−、CD56+)に対するF1およびF2製剤の影響を決定した。使用した2つの製剤は、NK表現型を示すNK細胞の割合(%)に有意に影響を与えなかった。BMMSCはCD10、CD34、CD44、CD45、CD90、CD98、CD105、CD117、CD166、CD200、Pan−サイトケラチン、およびKDRの発現に関しても分析した。これらのマーカーの発現、または発現の欠如が、F1またはF2製剤に製剤化したBMMSCにおいて有意に変わることはなかった。
濾過保持アッセイにおいて、2回のそれぞれのBMMSC製剤化、および1回アッセイのNK製剤化を実施した。BMMSC細胞とNK細胞の両方に関してF1製剤化はF2製剤化より有意に少ない凝集をもたらしたが、しかしながら製剤F2の影響は、NK細胞に関してよりBMMSCに関して顕著であった(図29)。
前述の結果は、骨髄由来間葉系幹細胞およびナチュラルキラー細胞は、同じ製剤中にCD10+、CD34−、CD105+、CD200+胎盤多分化能細胞のそれと同様に細胞凝集、生存率および表現型を保持して5%DMSO、5.5%デキストラン40、10%HSA中に首尾よく製剤化することができることを実証する。さらに、胎盤多分化能細胞に関して、BMMSCおよびNK細胞のPlasmalyte含有製剤は有意に高い細胞凝集率を示し、このように、デキストラン含有製剤が好ましい。
本明細書で開示する組成物および方法は、本明細書で記載する具体的な実施形態によって範囲が制限されない。実際、記載したもの以外に組成物および方法の様々な変更形態が、前述の記載および添付の図面から当業者に明らかとなる。このような変更形態は、添付の特許請求の範囲の範疇にあるものとする。
Claims (26)
- 胎盤幹細胞を含む組成物を作製する方法であって、
(a)前記細胞を、デキストランおよびヒト血清アルブミン(HSA)を含む溶液と接触させて細胞含有溶液を形成するステップ、
(b)細胞含有溶液をフィルターで濾過して該細胞含有溶液からマクロの細胞塊を除去するステップ、
(c)前記細胞含有溶液が1ミリリットル当たり約10±3×106個を超える細胞を含む場合、前記細胞を、デキストランを含む第1の希釈溶液で1ミリリットル当たり約10±3×106個以下の細胞に希釈するステップ、および
(d)前記細胞をステップ(c)の後に凍結保存し、それによって細胞を含む組成物を作製するステップ
を含む方法。 - ステップ(d)の前又は後に、細胞を含む組成物を、デキストランを含むがHSAを含まない第2の希釈溶液で希釈するステップをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記第1の希釈溶液または第2の希釈溶液中の前記デキストランがデキストラン40である、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記第1の希釈溶液および第2の希釈溶液中の前記デキストランがデキストラン40である、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記第1の希釈溶液中の前記デキストラン40が5.5%デキストラン40である、請求項3に記載の方法。
- HSAを含む前記溶液中の前記HSAが10%HSAである、請求項1に記載の方法。
- 前記第1の希釈溶液がHSAを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記第1の希釈溶液中の前記HSAが10%HSAである、請求項7に記載の方法。
- 前記第1の希釈溶液が凍結保護剤をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記凍結保護剤がDMSOである、請求項9に記載の方法。
- 前記第2の希釈溶液中の前記デキストラン40が10%デキストラン40である、請求項3に記載の方法。
- ステップ(a)の前記溶液が凍結保護剤を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記細胞を含む組成物が約7.5%〜約9%のデキストランを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記細胞を含む組成物が、1ミリリットル当たり約1.0±0.3×106個〜約5.0±1.5×106個の細胞を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記幹細胞が単離ヒト接着性胎盤幹細胞である、請求項1に記載の方法。
- 胎盤幹細胞を含む組成物を作製する方法であって、
(a)複数の単離ヒト接着性胎盤細胞を5.5%デキストラン40、10%HSA溶液に懸濁して細胞含有溶液を形成するステップ、
(b)細胞含有溶液を70μMフィルターで濾過して該細胞含有溶液からマクロの細胞塊を除去するステップ、
(c)細胞含有溶液を5.5%デキストラン40、10%HSA、および5%DMSO中に約10±3×106個細胞/mL以下に希釈するステップ、
(d)細胞を凍結保存するステップ、および
(e)細胞を解凍して前記細胞を含む組成物を生成するステップ
を含む方法。 - 胎盤幹細胞を含む組成物を作製する方法であって、
(a)複数の単離ヒト接着性胎盤細胞を遠心分離にかけて細胞を回収するステップ、
(b)細胞を5.5%デキストラン40に再懸濁するステップ、
(c)細胞を遠心分離にかけて細胞を回収するステップ、
(d)細胞を、10%HSAを含む5.5%デキストラン40溶液に再懸濁して細胞含有溶液を形成するステップ、
(e)細胞含有溶液を70μM〜100μMフィルターで濾過して該細胞含有溶液からマクロの細胞塊を除去するステップ、
(f)細胞含有溶液を5.5%デキストラン40、10%HSA、および5%DMSO中に約10±3×106個細胞/mL以下に希釈するステップ、
(g)細胞を凍結保存するステップ、および
(h)細胞を解凍して前記細胞を含む組成物を生成するステップ
を含む方法。 - 単離ヒト接着性胎盤細胞を含む組成物を作製するための方法であって、
(a)複数の単離ヒト接着性胎盤細胞を5.5%デキストラン40および10%ヒト血清アルブミン(HSA)を含む溶液中に供給して、単離ヒト接着性胎盤細胞を含む溶液を形成するステップ、
(b)前記単離ヒト接着性胎盤細胞を含む溶液を、目に見える細胞塊を除去するフィルターで濾過して濾過済み単離ヒト接着性胎盤細胞を生成するステップ、
(c)前記濾過済み単離ヒト接着性胎盤細胞を1ミリリットル当たり約10±3×106個の細胞にするのに十分な量の、5.5%デキストラン40、10%HSAおよび5%ジメチルスルホキシド(DMSO)を含む溶液で前記濾過済み単離ヒト接着性胎盤細胞を希釈するステップ、
(d)前記単離ヒト接着性胎盤細胞を10%デキストラン40で、約1:1〜約1:11の単離ヒト接着性胎盤細胞:デキストラン40の比で希釈して前記組成物を生成するステップ、および
(e)細胞を凍結保存するステップを含む方法。 - 前記フィルターが70μMフィルターである、請求項1に記載の方法。
- 前記フィルターが100μMフィルターである、請求項1に記載の方法。
- 前記細胞が単離ヒト接着性胎盤幹細胞である、請求項1に記載の方法。
- 前記単離ヒト接着性胎盤幹細胞がCD10+、CD34−およびCD105+である、請求項21に記載の方法。
- 前記CD10+、CD34−およびCD105+細胞がCD200+である、請求項22に記載の方法。
- 前記CD10+、CD34−、CD105+およびCD200+細胞がCD45−またはCD90+のいずれかである、請求項23に記載の方法。
- 前記CD10+、CD34−、CD105+およびCD200+細胞がCD45−およびCD90+である、請求項23に記載の方法。
- 単離ヒト接着性胎盤細胞を含む組成物を作製する方法であって、前記単離ヒト接着性胎盤細胞を、5.5%デキストランおよび10%HSAを含む溶液と接触させるステップ、単離ヒト接着性胎盤細胞を濾過して該組成物からマクロの細胞塊を除去するステップ、前記単離ヒト接着性胎盤細胞を、10%デキストラン40(w/v)を含む溶液で1ミリリットル当たり約10±3×106個の細胞に希釈するステップ、および細胞を凍結保存するステップを含む方法。
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