ES2199946T3 - Procedimiento para la produccion heterotrofa de productos microbianos con grandes concentraciones de acidos grasos omega-3 muy insaturados. - Google Patents
Procedimiento para la produccion heterotrofa de productos microbianos con grandes concentraciones de acidos grasos omega-3 muy insaturados.Info
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Abstract
SE DESCRIBE UN PROCESO PARA EL CULTIVO DE MICROFLORA DE THRAUSTOCHITRIUM, SCHIZOCHITRIUM Y MEZCLAS DE LAS MISMAS, QUE INCLUYE EL CRECIMIENTO DE LA MICROFLORA EN UN MEDIO DE FERMENTACION QUE CONTIENE SALES DE SODIO QUE NO TIENEN CLORO, EN PARTICULAR SULFATO DE SODIO. EN UNA VERSION REFERIDA DEL PRESENTE INVENTO, EL PROCESO PRODUCE MICROFLORA QUE TIENE UN TAMAÑO DE AGREGACION CELULAR UTIL PARA LA PRODUCCION DE PRODUCTOS ALIMENTICIOS PARA EMPLEAR EN AGRICULTURA. ADEMAS SE DESCRIBE UN PRODUCTO ALIMENTICIO QUE INCLUYE THRAUSTOCHITRIUM, SCHIZOCHITRIUM Y MEZCLAS DE LAS MISMAS, Y UN COMPONENTE SELECCIONADO ENTRE LINAZA, SEMILLAS DE COLZA, SOJA Y HARINA DE AGUACATE. TAL PRODUCTO ALIMENTICIO INCLUYE UN EQUILIBRIO DE ACIDOS GRASOS ALTAMENTE INSATURADOS OMEGA - 3 DE CADENA CORTA Y CADENA LARGA.
Description
Procedimiento para la producción heterótrofa de
productos microbianos con grandes concentraciones de ácidos grasos
omega-3 muy insaturados.
El campo de la presente invención se refiere a un
procedimiento para cultivar organismos heterótrofos para la
producción de lípidos con grandes concentraciones de ácidos grasos
omega-3 muy insaturados (HUFA) adecuados para
consumo humano y animal como aditivos de alimentación o para
utilización en productos farmacéuticos e industriales.
Los ácidos grasos omega-3 muy
insaturados (HUFA) son de interés comercial significativo porque
han sido reconocidos recientemente como importantes compuestos
dietéticos para prevenir la arteriesclerosis y las enfermedades
coronarias, para aliviar las enfermedades inflamatorias y para
retardar el crecimiento de las células tumorales. Estos efectos
beneficiosos son resultado tanto de los HUFA omega-3
que producen inhibición competitiva de compuestos producidos a
partir de ácidos grasos omega-6 y a partir de
compuestos beneficiosos producidos directamente a partir de los
propios HUFA omega-3 (Simopoulos et al.,
1986). Los ácidos grasos omega-6 son los HUFA
predominantes hallados en vegetales o animales. Actualmente, existe
una fuente dietética disponible en el comercio de HUFA
omega-3 en determinados aceites de pescado que
pueden contener hasta el 20 al 30% de estos ácidos grasos. Los
efectos beneficiosos de estos ácidos grasos se pueden obtener
comiendo pescado varias veces a la semana o tomando diariamente
aceite concentrado de pescado. Por consiguiente grandes cantidades
de aceite de pescado se procesan y se encapsulan cada año para
venderlo como complemento dietético. Sin embargo, existen varios
problemas significativos con estos complementos de aceite de
pescado, que incluyen la bioacumulación de vitaminas liposolubles y
grandes concentraciones de ácidos grasos saturados y
omega-6, los cuales pueden tener efectos
perjudiciales para la salud.
Otra fuente de HUFA omega-3 es la
microclora Thraustochytrium y Schizochytrium que se
tratan con detalle en la patente U.S. nº 5.130.242 relacionada. Esta
microflora presenta las ventajas de ser heterótrofa y capaz de
altos niveles de producción de HUFA omega-3.
Kendrick et al. (1992) Lipids 27(1),
15-19 muestra un procedimiento de cultivo de
Thraustochytrium spp. en un medio que contiene
Na_{2}HPO_{4}. Existe todavía la necesidad sin embargo de
mejorar los procedimientos de fermentación de esta microflora y de
identificación de utilizaciones mejoradas del producto de la
microflora.
Según la presente invención se proporciona un
procedimiento para el desarrollo de Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, que comprende el
cultivo de dichas Thraustochytrium, Schizochytrium y/o
mezclas de las mismas, en un medio de cultivo que no contiene una
sal de cloruro de sodio y que tiene menos de 500 miligramos de
cloruro por litro de dicho medio de cultivo.
Por lo tanto, la presente invención se refiere a
nuevos procedimientos para desarrollar la microflora de
Thraustochytrium, Schizochytrium y/o mezclas de las mismas,
en un medio de cultivo que contiene sales que no contienen cloruro
de sodio, incluyendo especialmente sulfato de sodio. Más
particularmente, una parte significativa de los requisitos de sodio
de la fermentación se suministra como sal de sodio que no contiene
cloruro. El presente procedimiento sirve particularmente para la
producción comercial porque el contenido en cloruro en el medio se
puede reducir significativamente, evitando de este modo los efectos
corrosivos del cloruro en el equipo de fermentación. Además, la
presente invención es especialmente útil para la producción de
productos alimenticios para utilización en acuicultura debido a que
Thraustochytrium y Schizochytrium cultivadas en tal medio
forman grupos mucho más pequeños que las cultivadas en un medio con
muchos cloruros y por lo tanto están más disponibles como fuente de
alimentación para larvas de gambas. En particular,
Thraustochytrium y Schizochytrium cultivadas en un medio que
contiene sulfato de sodio pueden tener agregados de células de un
tamaño medio menor de 150 \mum (150 micras) de diámetro.
Una forma de realización adicional de la presente
invención es la producción de una biomasa de microflora que
comprende Thraustochytrium, Schizochytrium y mezclas de las
mismas que tienen un tamaño medio del agregado celular menor de 150
\mum (150 micras).
La biomasa de microflora sirve para acuicultura y
en especial, para alimentar larvas de gambas debido a que la
microflora presenta las principales ventajas del alimento
necesitado por las gambas de un gran contenido en esterol y un gran
contenido en ácido graso muy insaturado omega-3
(HUFA). Además, debido al pequeño tamaño del agregado celular, la
larva de gamba, gamba de salmuera, rotíferos y moluscos pueden
alimentarse de microflora. La presente invención comprende además un
procedimiento para la producción de estos organismos que comprende
la alimentación de Thraustochytrium, Schizochytrium y
mezclas de las mismas, el crecimiento según la presente invención
con un tamaño celular medio menor de 150 \mum (150 micras) en
ellas.
Una forma de realización adicional de la presente
invención se refiere a un producto alimenticio que está compuesto
por microflora seleccionado de entre el grupo constituido por
Thraustochytrium, Schizochytrium y mezclas de las mismas, el
desarrollo según la presente invención y un componente adicional
seleccionado de entre el grupo constituido por linaza, rabina,
soja, harina de aguacate y mezclas de las mismas. Una ventaja
particular de este producto alimenticio es que tiene un gran
contenido en ácido graso omega-3 de cadena larga y
un gran contenido de ácido graso omega-3 de cadena
corta del componente adicional. En una forma de realización
adicional, el producto alimenticio se produce por extrusión. El
procedimiento de extrusión comprende mezclar la microflora con el
componente adicional, reduciendo de este modo el contenido de
humedad del producto alimenticio. El producto alimenticio se
extruye a continuación con calor, eliminando de este modo una parte
importante de la humedad reducida. La cantidad restante del
contenido original de humedad se elimina fácilmente mediante secado
con aire o cortos periodos de secado en estufa, reduciendo de este
modo los requisitos de energía total de secado y la degradación
potencial de los HUFA omega-3 mediante secado
prolongado a altas temperaturas.
La Fig. 1 es una representación gráfica de la
producción de HUFA en cepas recién aisladas de la invención,
representadas por \blacksquare y cepas aisladas anteriormente
representadas por +. Cada punto representa una cepa, la posición de
cada punto se determina mediante el porcentaje en peso de los
ácidos grasos totales que eran HUFA omega-3
(abscisas) y el porcentaje en peso de los ácidos grasos totales que
eran ácidos grasos omega-6 (ordenadas). Solamente
se representaron aquellas cepas de la invención en las que menos
del 10,6% (p/p) de los ácidos grasos totales eran
omega-6 y más del 67% de los ácidos grasos totales
eran omega-3.
La Fig. 2 es una representación gráfica de la
producción de HUFA en cepas recién aisladas de la invención,
representadas por \blacksquare y cepas aisladas anteriormente,
representadas por +. Cada punto representa una cepa, la posición de
cada punto se determina mediante el porcentaje en peso de los
ácidos grasos totales que eran HUFA omega-3
(abscisas) y el porcentaje en peso de los ácidos grasos totales que
eran ácido eicosapentanoico (EPA C20:5n-3)
(ordenadas). Solamente se representaron las cepas de la invención
en las que más del 67% de los ácidos grasos totales eran
omega-3 y más del 7,8% (p/p) de los ácidos grasos
totales eran C20:5n-3.
La Fig. 3 es una representación gráfica de la
composición de HUFA omega-3 en cepas recién
aisladas de la invención, representadas por \square y cepas
aisladas anteriormente, representadas por +. Cada punto representa
una cepa por separado. Los valores de las abscisas son fracciones
en peso de las HUFA omega-3 totales que eran
C20:5n-3 y en ordenadas están las fracciones en
peso de los ácidos grasos omega-3 totales muy
insaturados que eran C22:6n-3. Solamente se
representaron las cepas de la invención que tienen una fracción en
peso de 28% de C20:5n-3 ó mayor o una fracción en
peso de C22:6n-3 mayor del 93,6%.
La Fig. 4 es un gráfico que muestra el desarrollo
de varias cepas de la invención recién aisladas y de cepas aisladas
anteriormente, a 25ºC y a 30ºC. Las velocidades de crecimiento
están normalizadas para la velocidad de crecimiento de la cepa
U-30 a 25ºC. Anteriormente las cepas aisladas se
denominaron según sus números de acceso a ATCC.
La Fig. 5 es un gráfico de los rendimientos
totales de la producción celular después de la inducción por
limitación de nitrógeno. Se representó cada uno de los pesos en
seco sin cenizas, de los ácidos grasos totales y de los HUFA
omega-3, indicados, normalizados al correspondiente
valor para la cepa 28211. Todas las cepas se identifican mediante
números de acceso a ATCC.
La Fig. 6 es un gráfico de rendimientos de ácidos
grasos después del crecimiento en medios de cultivo que tiene la
salinidad indicada en abscisas. Las cepas mostradas son cepas S31
recién aisladas (ATCC 20888) (\square) y U42-2
(ATCC 20891) (+) y cepas aisladas anteriormente, ATCC 28211
(\lozenge) y ATCC 28209 (\Delta). Los rendimientos en ácido
graso se representan como rendimientos normalizados correspondientes
a un valor arbitrario de 1,00 basados en la velocidad media de
crecimiento presentada por S31 (ATCC 20888) (\square) en todo el
intervalo de salinidad probado.
La Fig. 7 es un gráfico de aumentos en el
contenido de HUFA omega-3 de los lípidos totales en
la gamba de salmuera, Artemia salina, cepa de
Thraustochytrium alimentada (ATCC 20890) aislada por el
procedimiento del Ejemplo 1. EPA = C20:5n-3; DHA =
C22:5n-3.
La Fig. 8 es un gráfico de aumentos en el
contenido de HUFA omega-3 de los lípidos totales en
la gamba de salmuera, Artemia salina, cepa de
Thraustochytrium alimentada (ATCC 20888) aislada por el
procedimiento del Ejemplo 1. EPA = C20:5n-3; DHA =
C22:5n-3.
Con fines de definición en toda la solicitud, se
entiende en la presente memoria que un ácido graso es un ácido
monocarboxílico alifático. Se entiende que los lípidos son grasas o
aceites que incluyen los ésteres de glicérido de ácidos grasos junto
con fosfátidos, esteroles, alcoholes, hidrocarburos, cetonas
asociados y compuestos relacionados. En la presente memoria se
utiliza un sistema taquigráfico empleado corrientemente para
indicar la estructura de los ácidos grasos (p. ej.: Weete, 1980).
Este sistema utiliza la letra "C" acompañada de un número que
indica el número de carbonos en la cadena de hidrocarburo, seguida
de dos puntos y un número que indica el número de dobles enlaces, es
decir, C20:5, ácido eicosapentanoico. Los ácidos grasos se numeran
empezando en el carbono carboxi. La posición de los dobles enlaces
se indica añadiendo la letra griega delta (\Delta) seguida del
número de carbono del doble enlace; es decir, C20:5 omega-
3\Delta^{5,8,11,14,17}. La notación "omega" es un sistema
taquigráfico para los ácidos grasos insaturados según la cual se
utiliza la numeración a partir del carbono
carboxi-terminal. Por comodidad, n-3
se utilizará para simbolizar "omega-3"
especialmente al utilizar la nomenclatura taquigráfica numérica
descrita en la presente memoria. Se entiende que los ácidos grasos
omega-3 muy insaturados son ácidos grasos
polietilénicos y que el último enlace etilénico es a partir del
carbono 3 e incluye el grupo metil terminal del ácido graso. Por lo
tanto, la nomenclatura completa para el ácido eicosapentanoico,
ácido graso omega-3 muy insaturado sería C20:5n-
3\Delta^{5,8,11,14,17}. Por motivo de brevedad, se omitirán las
posiciones del doble enlace (\Delta^{5,8,11,14,17}). El ácido
eicosapentanoico se denomina entonces C20:5n-3, el
ácido docosapentanoico
(C22:5n-3\Delta^{7,10,13,16,19}) es
C22:5n-3 y el ácido docosahexanoico
(C22:6n-3\Delta^{4,7,10,13,16,19}) es
C22:6n-3. La nomenclarura "ácido graso muy
insaturado" significa un ácido graso con 4 ó más dobles enlaces.
"Ácido graso poliinsaturado" significa un ácido graso con 1 a 3
dobles enlaces.
Se ha desarrollado un procedimiento de recogida e
identificación para aislar fácilmente muchas cepas de
microorganismos con la siguiente combinación de características
económicamente deseables para la producción de HUFA
omega-3: 1) capaz de crecimiento heterótrofo; 2)
gran contenido en HUFA omega-3; 3) unicelular; 4)
preferentemente con bajo contenido en HUFA saturados y
omega-6; 5) preferentemente células no pigmentadas
blancas o esencialmente incoloras; 6) preferentemente
termotolerantes (capacidad de crecer a temperaturas por encima de
30ºC); y 7) preferentemente eurihalinas (capaces de crecer en todo
un amplio intervalo de salinidades, pero especialmente a bajas
salinidades). Este procedimiento se describe con detalle en la
citada patente U.S. nº 5.130.242.
Utilizando el procedimiento de recogida e
identificación, se pueden aislar cepas unicelulares de microflora
que tienen contenidos de ácidos grasos hasta aproximadamente un
porcentaje en peso en seco celular total del 45% (%p. en seco) y que
presentan crecimiento en todo un intervalo de temperatura desde 15
a 48ºC y crecen en un medio de cultivo de muy baja salinidad.
Muchas de las cepas con muchos omegas-3 son de
crecimiento muy lento. Las cepas que se han aislado por el
procedimiento indicado anteriormente y que presentan rápido
crecimiento, buena producción y alto contenido en HUFA
omega-3, tienen contenidos en ácidos grasos
insaturados omega-3 hasta aproximadamente el 12% en
peso en seco.
La presente invención proporciona el cultivo de
Thraustochytrium, Schizochytrium y mezclas de las mismas con
gran contenido en HUFA omega-3, en un medio de
fermentación que contiene sales de sodio sin cloruros y
preferentemente sulfato de sodio. Más particularmente, una parte
importante de las necesidades de sodio de la fermentación se
suministran como sales de sodio que contienen cloruros. Por ejemplo,
menos del 75% del sodio en el medio de fermentación se suministra
como cloruro de sodio, más preferentemente menos del 50% y más
preferentemente menos del 25%. Una ventaja particular de la
presente invención es que el medio proporciona la fuente de sodio
que necesita la microflora para crecer en ausencia de una cantidad
importante de cloruro que puede corroer el vaso en el que se está
desarrollando la microflora y otra fermentación o el equipo del
tratamiento corriente abajo. Se ha observado sorprendentemente que
la microflora de la presente invención se puede desarrollar en
concentraciones de cloruro menores de 500 mg/l, preferentemente
menores de 250 mg/l más preferentemente entre 60 mg/l y 120 mg/l
aunque todavía se alcanzan altas concentraciones de biomasa para
azúcar del 50% o mayores. Como se trata más adelante, una ventaja
adicional de la presente invención es la producción de microflora
que tienen alto contenido en HUFA omega-3 pero
tienen un tamaño de agregado celular bastante pequeño para ser
consumido por la larva de gamba, la gamba de salmuera, rotíferos y
moluscos.
Las sales de sodio que no contienen cloruros
pueden comprender la ceniza de sosa (mezcla de carbonato de sodio y
óxido de sodio), carbonato de sodio, bicarbonato de sodio, sulfato
de sodio y mezclas de los mismos, y preferentemente comprenden
sulfato de sodio. La ceniza de sosa, el carbonato de sodio y el
bicarbonato de sodio tienden a aumentar el pH del medio de
fermentación, requiriendo de este modo etapas de control para
mantener el pH apropiado del medio. La concentración de sulfato de
sodio es eficaz para satisfacer los requisitos de salinidad de la
microflora, preferentemente la concentración de sodio (expresada
como g/l de Na) es mayor de 1,0 g/l, más preferentemente entre 1,0
g/l y 50,0 g/l y más preferentemente entre 2,0 g/l y 25 g/l.
Se ha observado sorprendentemente que la
fermentación de las cepas en presencia de una sal de sodio sin
cloruro y particularmente, el sulfato de sodio limita el tamaño del
agregado celular de las cepas menores de 150 \mum (150 micras),
preferentemente menos de 100 \mum (100 micras) y más
preferentemente menos de 50 \mum (50 micras). Según se utiliza en
la presente memoria, el término tamaño del agregado celular se
refiere al diámetro medio aproximado de los grupos o agregados de
células en un medio de fermentación de un cultivo microfloral.
Típicamente, más del 25% de los agregados celulares en un cultivo
microfloral tienen el tamaño del agregado celular inferior al tamaño
medio, más preferentemente más del 50 por ciento y más
preferentemente más del 75 por ciento. Las células de microflora
producidas según la presente invención satisfacen los parámetros
del tamaño del agregado celular descritos anteriormente tanto en el
medio de fermentación como después de la congelación y/o secado de
la biomasa si se vuelve a poner en suspensión en el líquido o se
agita físicamente, tal como con un mezclador o un agitador de
vórtice. El presente procedimiento es especialmente importante para
la microflora que se replica por bipartición sucesiva (en la que
una sola célula se replica dividiéndose en dos células, cada una de
las cuales se divide en dos más, etc.) debido a que como las células
experimentan repetida y rápidamente este proceso, las células
tienden a agruparse formando agregados multicelulares que con
frecuencia están fuera de los parámetros del tamaño del agregado
celular identificados anteriormente. Schizochytrium se
replican por bipartición sucesiva y formando esporangios que
liberan zoosporas. Thraustochytrium, sin embargo, se
replican solamente formando esporangios y liberando zoosporas. Para
Thraustochytrium que se replican por formación de
esporangios/zoosporas, el agrupamiento puede ser también un
problema, particularmente debido a que incluso la totalidad del
número de células de un agregado puede no ser tan grande como los
agregados formados por bipartición sucesiva, los tamaños celulares
individuales de Thraustochytrium tienden a ser mayores, y
por lo tanto, los grupos de número de células pequeño son mayores.
Sin embargo, se ha identificado una cepa depositada de
Thraustochytrium, ATCC 26185, que no presenta agregación
significativa.
En una forma de realización de la presente
invención, se ha descubierto que limitando el contenido de oxígeno
del medio de fermentación durante el cultivo de
Thraustochytrium, Schizochytrium y mezclas de las mismas, el
contenido en lípidos de las cepas se puede aumentar. La
concentración óptima de oxígeno para la producción de lípidos se
puede determinar en cualquier microflora particular variando el
contenido de oxígeno del medio. En particular, el contenido de
oxígeno del medio de fermentación se mantiene en un contenido en
oxígeno menor del 40% de saturación y preferentemente entre el 5% de
saturación y el 40% de saturación.
El cultivo de las cepas mediante el procedimiento
de la invención se puede efectuar a cualquier temperatura que
conduzca al cultivo satisfactorio de las cepas; por ejemplo, entre
5ºC y 48ºC, preferentemente entre 15ºC y 40ºC y más preferentemente
entre 25ºC y 35ºC. El medio de cultivo se hace típicamente más
alcalino durante la fermentación si el pH no está controlado por la
adición de ácido o tampones. Las cepas crecerán en todo el
intervalo de pH desde 5,0 a 11,0 con un intervalo preferente de 6,0
a 8,5.
En la patente U.S. nº 5.130.242 se tratan con
detalle varios parámetros de la fermentación para inocular,
cultivar y recuperar la microflora. La biomasa recogida de una
etapa de fermentación se puede secar (p. ej.: secado por
pulverización, secado en túnel, secado al vacío o por un
procedimiento similar) y se utiliza como alimento o complemento
alimenticio para cualquier animal cuya carne o productos consuman
los seres humanos. De forma parecida, los HUFA
omega-3 extraídos se pueden utilizar como alimento o
como complemento alimenticio. Alternativamente, la biomasa recogida
y lavada se puede utilizar directamente (sin secado) como
complemento alimenticio. Para prolongar su periodo de conservación,
la biomasa húmeda se puede acidificar (pH aproximado =
3,5-4,5) y/o pasteurizar o calentar por expansión
para inactivar los enzimas y a continuación enlatar, embotellar o
empaquetar al vacío o en atmósfera no oxidante (p. ej.: N_{2} ó
CO_{2}). El término "animal" significa cualquier organismo
perteneciente al reino Animal e incluye, sin limitación, cualquier
animal del que se obtienen carne de aves de corral, alimentos
marinos, carne de vaca, de cerdo o de cordero. Los alimentos
marinos proceden, sin limitación, de peces, gambas y crustáceos. El
término "productos", comprende cualquier otro producto
distinto de la carne procedente de tales animales, incluyendo, sin
limitación, huevos u otros productos. Cuando se alimenta a tales
animales, los HUFA omega-3 en la biomasa recogida o
los HUFA omega-3 extraídos se incorporan en la
carne, los huevos u otros productos de tales animales para aumentar
el contenido en HUFA omega-3 de éstos.
Una forma de realización adicional de la presente
invención es la utilización de la biomasa recogida como producto
alimenticio para larvas de gambas, gambas de salmuera, rotíferos y
moluscos y en especial, larvas de gambas. Durante la etapa de
crecimiento de larva, las larvas de gamba no pueden utilizar ninguna
fuente de alimentación porque la fuente de alimentación es
demasiado grande. En particular, en determinadas etapas del
desarrollo, las larvas de gamba no pueden utilizar una fuente de
alimentación que tenga un diámetro mayor de 150 \mum (150
micras). Por lo tanto, el cultivo de la microflora en el medio de
fermentación que contiene una sal de sodio sin cloruro, y
particularmente sulfato de sodio, como se trató antes extensamente,
son adecuadas para utilizar como producto alimenticio para gambas.
Como se discutió anteriormente el cultivo de la microflora en tales
condiciones típicamente tiene un tamaño de agregado celular inferior
a 150 \mum (150 micras), preferentemente menor de 100 \mum (100
micras) y más preferentemente menor de 50 \mum (50 micras).
Una ventaja adicional de la utilización de
microflora de la presente invención como fuente alimenticia para
gambas es que dicha microflora tenga un contenido en esterol
importante incluyendo colesterol, que es un requisito alimenticio
principal para las gambas. La microflora de la presente invención
típicamente tiene un contenido en esterol preferentemente de por lo
menos 0,1% en peso en seco sin cenizas (afdw), más preferentemente
de por lo menos 0,5% afdw, y aún más preferentemente de por lo
menos 1,0% afdw. Además, la microflora de la presente invención
típicamente tiene un contenido en colesterol de preferentemente por
lo menos 15% del contenido de esterol total más preferentemente de
por lo menos 25% y aún más preferentemente por lo menos 40% del
contenido de esterol total. Además, la biomasa de microflora de la
presente invención proporciona asimismo gambas con requisitos
nutritivos adicionales tales como ácidos grasos
omega-6, proteínas, carbohidratos, pigmentos y
vitaminas.
El producto microbiano de la presente invención
es de valor como fuente de HUFA omega-3 para peces,
gambas y otros productos producidos mediante acuicultura. El
producto se puede utilizar como producto alimenticio descrito
anteriormente para gambas; o añadir directamente como complemento
en la alimentación de gambas y peces, generalmente; o se puede
alimentar a gambas de salmuera u otros organismos con alimentos
vivos destinados al consumo para un organismo desarrollado por
acuicultura. La utilización de tal microflora permite de esta
manera al acuicultor de gambas obtener velocidades de crecimiento
significativamente mayores y/o índices de supervivencia para las
larvas de gambas y producir gambas en estado
post-larvario que son mucho más resistentes y
robustas.
Para la mayoría de las aplicaciones de
alimentación, el contenido en ácido graso de las células recogidas
será aproximadamente del 15 al 50% en peso en seco, siendo el
material restante en su mayoría proteínas y carbohidratos. La
proteína puede contribuir significativamente al valor nutritivo de
las células como varias de las cepas que se han evaluado que tienen
todas aminoácidos esenciales y se considerarían una proteína
nutricionalmente equilibrada.
Una forma de realización adicional de la presente
invención es la producción de un producto alimenticio utilizando
Thraustochytrium, Schizochytrium y mezclas de las mismas, de
la presente invención, combinadas con un componente adicional
seleccionado de entre el grupo constituido por rabina, linaza, soja
y harina de aguacate. Una ventaja particular de esta forma de
realización es que el producto alimenticio contiene tanto HUFA
omega-3 de cadena corta procedente del componente
adicional como HUFA omega-3 de cadena larga
procedente de la microflora. Los productos alimenticios que tienen
linaza, rabina, soja y harina de aguacate se conocen porque sirven
para aportar una fuente de HUFA omega-3 de cadena
corta y para aportar adicionalmente una fuente de HUFA
omega-3 de cadena corta, que se puede extender a
los seres humanos y a los animales que las ingieren. Tales
productos alimenticios, sin embargo, poseen las desventajas de tener
altos contenidos en colina procedentes del componente adicional,
que pueden formar aminas primarias y producen un olor a pescado
desagradable; y compuestos tóxicos procedente del componente
adicional, que en grandes concentraciones pueden, por ejemplo,
inhibir la puesta de huevos por las gallinas o producir que los
animales pierdan el gusto por su alimento. Como tal, el producto
alimenticio de la presente invención tiene la ventaja de un
contenido reducido en linaza, rabina, soja o harina de aguacate
porque el organismo que ingiere el producto alimenticio no necesita
grandes cantidades de HUFA omega-3 de cadena corta
con el fin de transformarlos en HUFA de cadena larga. Por lo tanto,
el contenido reducido en linaza y rabina del producto alimenticio
produce menores cantidades de colina y/o de compuestos tóxicos
inhibidores presentes en el producto alimenticio.
La cantidad de Thraustochytrium,
Schizochytrium y mezclas de las mismas, utilizadas en el
producto alimenticio puede variar entre el 5% y el 95% en peso. El
componente adicional puede estar presente en el producto alimenticio
en un intervalo entre el 5% al 95% en peso. Adicionalmente, el
producto alimenticio puede incluir también otros componentes,
incluyendo granos, complementos, vitaminas, aglutinantes y
conservantes.
En una forma de realización preferida, el
producto alimenticio anterior se produce utilizando un
procedimiento de extrusión. El procedimiento de extrusión implica
la mezcla de la microflora con el componente adicional, reduciendo
de este modo la humedad en la biomasa de la microflora mediante la
cantidad del componente adicional mezclado. El producto alimenticio
se extruye con calor, eliminando de este modo la humedad adicional
del producto alimenticio. El producto resultante que tiene un
contenido bajo en humedad se puede secar al aire o secar por
periodos en la estufa relativamente cortos reduciendo de este modo
los requisitos de energía total de secado y la degradación potencial
de los HUFA omega-3 debido a periodos de tiempo
prolongados a altas temperaturas. Además, el calor del
procedimiento de extrusión puede degradar alguno de los componentes
tóxicos indeseables hallados generalmente en el componente adicional
que puede, por ejemplo, inhibir la puesta de huevos por las
gallinas o producir que los animales pierdan el gusto por su
alimento.
La presente invención se describirá con más
detalle por medio de ejemplos prácticos. Las especies que
satisfacen los criterios de selección descritos anteriormente no
han sido descritas en la técnica anterior. Empleando estos criterios
de selección, se han aislado más de 25 cepas potencialmente
prometedoras de aproximadamente 1000 muestras identificadas. Fuera
de las aproximadas 20.500 cepas en la American Type Culture
Collection (ATCC), se identificaron posteriormente 10 cepas
que pertenecen al mismo grupo taxonómico que las cepas aisladas. Se
obtuvieron cepas todavía viables de la Collection y se
utilizaron para comparar con las cepas aisladas y cultivadas por los
procedimientos expuestos. Los resultados de esta comparación se
presentan en los Ejemplos 4 y 5 más adelante.
Los teóricos taxonómicos más recientes sitúan a
los Traustoquídridos con las algas o con los protistas de tipo
alga. Todas las cepas de los microorganismos unicelulares dadas a
conocer y reivindicadas en la presente memoria son elementos del
orden Traustoquitriales (Orden: Traustoquitriales; familia:
Traustoquitriáceas; Género: Thraustochytrium o
Schizochytrium). Para los fines generales de discusión en la
presente memoria, estos microorganismos se denominarán microflora
para indicar mejor su exacta posición taxonómica indeterminada.
Las nuevas cepas identificadas a continuación se
depositaron bajo el tratado de Budapest sobre Reconocimiento
Internacional del Depósito de Microorganismos con objeto del
procedimiento de la patente.
Los microorganismos preferidos utilizados en la
presente invención poseen todos características identificadoras de
las cepas depositadas y, en particular, las características
identificadoras de ser capaces de producir los HUFA
omega-3 descritos en la presente memoria y
poseyendo características de tamaño de agregado celular cuando se
cultivan en condiciones como las descritas en la presente memoria.
En particular, los microorganismos preferidos de la presente
invención se refieren a los siguientes microorganismos depositados
y a sus mutantes.
Cepa | ATCC n^{o} | Fecha de depósito |
Schizochytrium S31 | 20888 | 8/8/88 |
Schizochytrium S8 | 20889 | 8/8/88 |
La presente invención, en tanto se expone desde
el punto de vista de las cepas del organismo específico, está
destinada a incluir todos los procedimientos y cepas obtenibles y
útiles según las enseñanzas dadas a conocer en la presente memoria,
incluyendo tales sustituciones, modificaciones y optimizaciones que
serían expedientes disponibles para los expertos destacados en la
materia.
Los siguientes ejemplos y resultados de la prueba
se proporcionan con fines de ilustración y no pretenden limitar el
alcance de la invención (Ejemplos 1 a 12 son Ejemplos
preparativos).
Se recogió una muestra de agua de 150 ml de un
estanque salino interior, poco profundo y se almacenó en una
botella de polietileno estéril. Se procuró incluir alguno de los
materiales vegetales vivos y de los detritus naturales (materia
vegetal y animal podrida) junto con la muestra de agua. Se colocó
la muestra en hielo hasta regresar al laboratorio. En el
laboratorio, se agitó la muestra de agua durante 15 a 30 segundos y
se pipeteó 1 a 10 ml de la muestra o se vertió en una unidad
filtrante conteniendo 2 tipos de filtros: 1) en la parte superior,
un filtro de Whatman nº 4 estéril de 47 mm de diámetro con un tamaño
de poro aproximadamente de 25 \mum; y 2) debajo del filtro de
Whatman, un filtro de policarbonato de 47 mm de diámetro
con aproximadamente un tamaño de poro de 1,0 \mum. Dadas las
ligeras variaciones de los tamaños nominales de poro para los
filtros, las células recogidas en el filtro de policarbonato varían
en tamaño desde aproximadamente 1,0 \mum hasta aproximadamente 25
\mum.
Se retiró el filtro de Whatman y se descargó. El
filtro de policarbonato se colocó en un medio sólido
F-1 en una placa de Petri, consistiendo dicho medio
(por litro) en: 600 ml de agua de mar ( se puede utilizar agua de
mar artificial), 400 ml de agua destilada, 10 g de agar, 1 g de
glucosa, 1 g de hidrolizado de proteínas, 0,2 g de extracto de
levadura, 2 ml de KH_{2}PO_{4} 0,1 M, 1 ml de una solución de
vitaminas (vitaminas A) (conteniendo 100 mg/l de tiamina, 0,5 mg/l
de biotina y 0,5 mg/l de cianocobalamina), 5 ml de una mezcla de
metales en trazas (metales PII, conteniendo por litro: 6,0 g de
Na_{2}EDTA, 0,29 g de FeCl_{3}\cdot6H_{2}O, 6,84 g de
H_{3}BO_{3}, 0,86 g de MnCl_{2}\cdot4H_{2}O, 0,06 g de
ZnCl_{2}, 0,026 g de CoCl_{2}\cdot6H_{2}O, (0,052 g de
NiSO_{4}\cdotH_{2}O, 0,002 g de CuSO_{4}\cdot5H_{2}O y
0,005 g de Na_{2}MoO_{4}\cdot2H_{2}O y 500 mg de sulfato de
estreptomicina y 500 mg de penicilina-G. La placa de
agar se incubó en la oscuridad a 30ºC. Después de 2 a 4 días
aparecieron numerosas colonias sobre el filtro. Las colonias de
microflora unicelular (excepto levadura) se seleccionaron de la
placa y se rayaron en una nueva placa de composición similar media.
Se puso especial atención en seleccionar todas las colonias
constituidas por células blancas incoloras. Se incubó la nueva
placa a 30ºC y se seleccionaron colonias individuales después de un
periodo de incubación de 2 a 4 días. Las colonias individuales se
seleccionaron a continuación y se colocaron en 50 ml de un medio
líquido que contenía las mismas fertilizaciones orgánicas que en
las placas de agar. Estos cultivos se incubaron durante 2 a 4 días a
30ºC en una mesa con agitador rotatorio (100 a 200 rpm). Cuando
pareció que los cultivos alcanzaban la máxima densidad, se recogió
20 a 40 ml de cultivo, se centrifugó y se liofilizó. A continuación
se analizó la muestra mediante técnicas cromatográficas estándar
bien conocidas (p. ej.: Lepage y Roy, 1984) para identificar el
contenido en ácido graso de la cepa. Se identificaron de este modo
las cepas con HUFA omega-3, y los cultivos de estas
cepas se conservaron para identificación posterior.
Utilizando el procedimiento de recogida e
identificación indicado anteriormente, se han aislado más de 150
cepas de microflora unicelular que tienen altos contenidos de HUFA
omega-3 como porcentaje de los ácidos grasos totales
y que presentan crecimiento en todo un intervalo de temperatura de
15 a 48ºC. Las cepas que tienen menos del 1% (como % de ácidos
grasos totales) también se pueden aislar de los HUFA
C20:4n-6 y C22:5n-6 indeseables
para algunas aplicaciones. Las cepas con alto contenido en
omega-6 se pueden asimismo aislar. Las cepas de
estas microfloras se pueden aislar repetidamente desde la misma
posición utilizando el procedimiento señalado anteriormente. Pocas
cepas recién aisladas tienen perfiles de ácido graso muy similares.
La posibilidad de que algunas sean cepas duplicadas de la misma
cepa no se puede regular actualmente. La identificación adicional
para otros rasgos deseables tal como tolerancia a la salinidad o
capacidad para utilizar una variedad de fuentes de carbono y de
nitrógeno se puede realizar a continuación utilizando un
procedimiento similar.
Se seleccionaron células de Schizochytrium
aggregatum (ATCC 28209) del medio sólido F-1 y
se inocularon en 50 ml de medio FFM (Fuller et al., 1964).
Este medio contiene: agua de mar, 1000 ml; glucosa, 1,0 g;
hidrolizado de gelatina, 1,0 g; extracto de hígado, 0,01 g;
extracto de levadura, 0,1 g; metales PII, 5 ml; solución de
vitaminas B, 1 ml (Goldstein et al., 1969); y 1 ml de una
solución de antibióticos (25 g/l de sulfato de estreptomicina y
penicilina G). 1,0 ml de la mezcla de vitaminas (pH 7,2) contiene:
tiamina HCl, 200 \mug; biotina, 0,5 \mug; cianocobalamina, 0,05
\mug; ácido nicotínico, 100 \mug; pantotenato de calcio, 100
\mug; riboflavina, 5,0 \mug; pirodoxina HCl, 40,0 \mug;
pirodoxamina 2 HCl, 20,0 \mug; ácido
p-aminobenzoico, 10 \mug; cloro HCl, 500 \mug;
inositol, 1,0 mg; timina, 0,8 mg; ácido orótico, 0,26 mg; ácido
folínico, 0,2 \mug y ácido fólico, 2,5 \mug. El cultivo se
colocó en un agitador rotatorio (200 rpm) a 27ºC. Después de 3 a 4
días, se transfirió 1 ml de este cultivo a 50 ml de cada uno de los
tratamientos siguientes: 1) medio FFM (como referencia); y 2) medio
FFM con la adición de 250 mg/l de KH_{2}PO_{4} y 250 mg/l de
extracto de levadura. Estos cultivos se colocaron en un agitador
rotatorio (200 rpm) a 27ºC durante 48 h. Las células se recogieron
y se cuantificó el rendimiento en células. En el tratamiento 1,
la concentración final de células sobre la base de peso en
seco sin cenizas fue de 616 mg/l. En el tratamiento 2, la
concentración final de las células fue de 1675 mg/l, demostrando el
efecto intensificado de incrementar el PO_{4} y las
concentraciones de extracto de levadura en el medio de cultivo.
Se seleccionaron células de Schizochytrium
sp. S31 (ATCC nº 20888) del medio sólido F-1 y se
colocaron en 50 ml de medio M-5. Este medio consta
de (sobre la base de un litro): extracto de levadura, 1 g; NaCl, 25
g; MgSO_{4}\cdot7H_{2}O, 5 g; KCl, 1 g; CaCl_{2}, 200 mg;
glucosa, 5 g; glutamato, 5 g; KH_{2}PO_{4}, 1 g; metales PII, 5
ml; solución de vitaminas A, 1 ml y solución de antibiótico, 1 ml.
Se ajustó el pH de la solución a 7,0 y la solución se filtró
esterilizada. Se prepararon soluciones estériles de licor saturado
de maíz (4 g/40 ml; pH 7,0) y extracto de levadura (1 g/40 ml; pH
7,0). Se añadieron a una serie de matraces con medio
M-5, la siguiente cantidad de solución de extracto
de levadura: 1) 2 ml; 2) 1,5 ml; 3) 1 ml; 4) 0,5 ml y 5) 0,25 ml. A
otra serie de matraces con medio M-5 se añadieron
extracto de levadura y soluciones de licor saturado de maíz en las
siguientes cantidades: 1) 2 ml de extracto de levadura; 2) 1,5 ml
de extracto de levadura y 0,5 ml de licor saturado de maíz; 3) 1 ml
de extracto de levadura y 1,0 ml de licor saturado de maíz; 4) 0,5
ml de extracto de levadura y 1,5 ml de licor saturado de maíz y 5)
2 ml de licor saturado de maíz. Se utilizó un ml del cultivo en el
medio F-1 para inocular cada matraz. Se colocaron en
un agitador rotatorio a 27ºC durante 48 h. Se recogieron las
células por centrifugación y se determinó el rendimiento en células
(como peso en seco sin cenizas). Los resultados se muestran en la
Tabla 1. Los resultados indican que la adición de extracto de
levadura hasta 0,8 g/l de medio puede aumentar el rendimiento en
células. Sin embargo, la adición del licor saturado de maíz es aún
más eficaz y produce el doble de rendimiento de los tratamientos con
extracto de levadura añadido. Esto es muy ventajoso para la
producción económica de células ya que el licor saturado de maíz es
mucho menos caro que el extracto de levadura
Tratamiento | Peso en seco sin cenizas |
(Cantidad de complemento de nutriente añadido) | (mg/l) |
Ext. de levadura 2,0 ml | 4000 |
Ext. de levadura 1,5 ml | 4420 |
Ext. de levadura 1,0 ml | 4300 |
Ext. de levadura 0,5 ml | 2780 |
Ext. de levadura 0,25 ml | 2700 |
Ext. de levadura 2,0 ml | 4420 |
Ext. de levadura 1,5 ml + CSL* 0,5 ml | 6560 |
Ext. de levadura 1,0 ml + CSL 1,0 ml | 6640 |
Ext. de levadura 0,5 ml + CSL 1,5 ml | 7200 |
CSL 2,0 ml | 7590 |
*CSL = licor saturado de maíz |
Se seleccionó una batería de 151 cepas recién
aisladas, según el procedimiento descrito en el Ejemplo 1, se
tomaron muestras de cultivo avanzado en fase exponencial y se
analizó cuantitativamente el contenido en HUFA por cromatografía en
gas-líquido. Todas las cepas se cultivaron en medio
M1 ó en medio FFM líquido, que dieron siempre el mayor rendimiento
en células. El medio M1 tiene la misma composición que el medio M5,
excepto que las concentraciones en glucosa y glutamato son de 1 g/l.
Además, se obtuvieron cinco especies de Thraustochytrium o
Schizochytrium anteriormente aisladas procedentes de la
American Type Culture Collection, representando todas las
cepas que se obtendrían en forma viable a partir de la recogida.
Estas cepas fueron: T. aureum (ATCC nº 28211), T.
aureum (ATCC nº 34304), T. roseum (ATCC nº 28210), T.
straitum (ATCC nº 34473) y S. aggregatum (ATCC nº
28209). Todas las cepas presentaron crecimiento abreviado en los
medios convencionales y mostraron generalmente el mejor crecimiento
en los medios de la presente invención, incluyendo el medio M5 y el
medio FFM. La producción de ácido graso de cada una de las cepas
conocidas se midió como se describe, basándose en el cultivo
mejorado de las cepas en los medios de la invención.
Los picos de ácido graso se identificaron
mediante la utilización de compuestos puros de estructura conocida.
La cuantificación, desde el punto de vista del porcentaje en peso
de los ácidos grasos totales, se realizó integrando los picos
cromatográficos. Los compuestos identificados fueron: ácido
palmítico (C16:0), C20:4n-6 y C22:1 (que el sistema
empleado no resolvió por separado), C20:5n-3,
C22:5n-6, C22:5n-3 y
C22:6n-3. El resto, ácidos grasos de peso molecular
generalmente inferior, se incluyeron en la categoría combinada de
"otros ácidos grasos". Los ácidos grasos
omega-3 se calcularon como suma de
20:5n-3, 22:5n-3 y
22:6n-3. Los ácidos grasos omega-6
totales se calcularon como suma del pico 20:4/22:1 y del pico
22:5n-6.
Los resultados se muestran en las Tablas 2 a 3 y
se ilustran en las Figs. 1 a 3. De la Tabla 2 se puede apreciar que
se pueden aislar un gran número de cepas por el procedimiento de la
invención y que un gran número de cepas superan las cepas conocidas
anteriormente por varios criterios importantes. Por ejemplo, 102
cepas produjeron por lo menos 7,8% en peso de ácidos grasos totales
C20:5w3, un porcentaje mayor de este ácido graso que cualquier cepa
conocida anteriormente. Las cepas 23B (ATCC nº 20892) y 12B (ATCC
nº 20890) son ejemplos de tales cepas. Treinta (30) cepas de la
invención produjeron por lo menos el 68% en peso de ácidos grasos
totales como ácidos grasos omega-3, más que
cualquier cepa conocida anteriormente. La cepa 23B (ATCC nº 20892)
es un ejemplo de tales cepas. Setenta y seis (76) cepas de la
invención produjeron no más del 10% en peso de ácidos grasos
totales como ácidos grasos omega-6, componentes de
la dieta humana considerados indeseables, menos que cualquier cepa
anteriormente conocida. Las cepas 23B (ATCC nº 20892) y 12B (ATCC
nº 20890) son ejemplos de tales cepas. Además, existen 35 cepas de
la invención que producen más del 25% en peso de los ácidos grasos
totales como ácidos grasos omega-6, más que
cualquier cepa anteriormente conocida. Aunque tales cepas puedan
tener un intervalo más estrecho de utilizaciones con fines
dietéticos, sirven como aportes para la síntesis química de partida
de eicosanoides partiendo de ácidos grasos
omega-6.
Además, los datos dan a conocer muchas cepas de
la invención que producen una gran proporción de ácidos grasos
omega-3 totales como C22:6n-3. En la
Tabla 3, se compararon 48 de las cepas mostradas en la Tabla 2, con
las cepas anteriormente conocidas, mostrando cada una de
C20:5n-3, C22:5n-3 y
C22:6n-3 como porcentaje en peso del contenido total
de omega-3. Quince cepas tuvieron por lo menos el
94% en peso de los ácidos grasos omega-3 totales
como C22:6n-3, más que cualquier cepa anteriormente
conocida. La cepa S8 (ATCC nº 20889) fue un ejemplo de tales cepas.
Dieciocho cepas tuvieron por lo menos el 28% en peso de los ácidos
grasos omega-3 totales como
C20:5n-3, más que cualquier cepa anteriormente
conocida. La cepa 12B (ATCC nº 20890) fue un ejemplo de tales
cepas.
Tanto por ciento de ácidos grasos totales | Omega-3 | Omega-6 | Cepa | ||||||
C16:0 | C20:4w6 | C20:5w3 | C22:5w6 | C22:5w3 | C22:6w3 | Otro FA | totales | totales | |
30,4% | 2,8% | 6,6% | 3,2% | 0,2% | 8,3% | 48,5% | 15,1% | 6,0% | 21 |
22,9% | 0,4% | 2,3% | 15,5% | 0,5% | 47,0% | 11,5% | 49,7% | 15,9% | ATCC20889 |
14,9% | 6,5% | 12,0% | 11,8% | 0,4% | 49,7% | 4,7% | 62,1% | 18,3% | U40-2 |
40,3% | 1,7% | 3,8% | 8,6% | 0,0% | 8,2% | 37,4% | 12,0% | 10,2% | 21B |
20,7% | 0,4% | 7,8% | 0,0% | 0,0% | 1,1% | 70,1% | 8,9% | 0,4% | BG1 |
26,0% | 5,7% | 1,5% | 9,7% | 0,7% | 9,7% | 46,7% | 11,9% | 15,4% | 56A |
16,4% | 1,4% | 10,0% | 1,9% | 2,2% | 46,4% | 21,8% | 58,6% | 3,3% | 11A-1 |
23,7% | 3,3% | 10,5% | 1,9% | 1,8% | 29,9% | 28,9% | 42,2% | 5,2% | 4A-1 |
18,7% | 6,9% | 9,2% | 11,9% | 3,2% | 25,2% | 24,9% | 37,5% | 18,8% | 17B |
15,4% | 4,2% | 7,3% | 9,5% | 0,9% | 51,2% | 11,6% | 59,3% | 13,7% | ATCC20891 |
22,3% | 3,9% | 7,6% | 23,5% | 0,5% | 22,1% | 20,2% | 30,2% | 27,4% | S44 |
14,4% | 2,3% | 15,0% | 18,4% | 0,7% | 43,8% | 5,5% | 59,4% | 20,7% | U30 |
22,1% | 7,8% | 3,1% | 12,7% | 1,0% | 14,9% | 38,3% | 19,0% | 20,5% | 59A |
18,1% | 2,3% | 6,9% | 9,1% | 0,8% | 52,2% | 10,6% | 59,9% | 11,4% | U37-2 |
15,8% | 3,9% | 8,8% | 11,6% | 1,2% | 53,3% | 5,5% | 63,3% | 15,5% | S50W |
23,7% | 3,8% | 6,3% | 6,9% | 0,6% | 43,0% | 15,6% | 50,0% | 10,7% | ATCC20891 |
10,0% | 0,0% | 0,0% | 0,0% | 0,0% | 0,0% | 90,0% | 0,0% | 0,0% | UX |
16,6% | 6,3% | 11,9% | 13,3% | 1,7% | 43,0% | 7,3% | 56,6% | 19,5% | LW9 |
17,3% | 2,3% | 8,4% | 11,4% | 0,7% | 53,6% | 6,5% | 62,6% | 13,6% | C32-2 |
23,8% | 1,2% | 6,4% | 2,5% | 1,9% | 34,4% | 29,8% | 42,6% | 3,7% | 5A-1 |
17,1% | 5,2% | 11,1% | 7,6% | 2,2% | 27,2% | 29,6% | 40,4% | 12,9% | BG1 |
25,4% | 2,2% | 9,6% | 7,0% | 1,1% | 46,0% | 8,8% | 56,7% | 9,1% | U3 |
16,9% | 12,0% | 6,6% | 16,2% | 0,4% | 25,1% | 22,8% | 32,1% | 28,2% | 55B |
26,3% | 2,6% | 8,6% | 2,0% | 2,5% | 32,4% | 25,5% | 43,5% | 4,6% | 18A |
19,4% | 0,3% | 9,8% | 0,0% | 0,3% | 38,4% | 31,7% | 48,6% | 0,3% | 32B |
TABLA 2
(continuación)
Tanto por ciento de ácidos grasos totales | Omega-3 | Omega-6 | Cepa | ||||||
C16:0 | C20:4w6 | C20:5w3 | C22:5w6 | C22:5w3 | C22:6w3 | Otro FA | totales | totales | |
16,0% | 16,7% | 8,6% | 18,4% | 0,0% | 22,5% | 17,7% | 31,1% | 35,1% | 56B |
18,6% | 7,7% | 11,4% | 3,6% | 4,3% | 31,7% | 22,7% | 47,4% | 11,2% | SX2 |
17,8% | 4,4% | 16,2% | 6,4% | 3,7% | 33,6% | 17,8% | 53,5% | 10,9% | 53B |
16,8% | 2,7% | 13,8% | 20,5% | 1,4% | 39,3% | 5,5% | 54,4% | 23,3% | S49 |
20,8% | 8,0% | 8,9% | 6,4% | 1,7% | 33,9% | 20,3% | 44,5% | 14,4% | S3 |
14,8% | 0,3% | 3,7% | 3,9% | 0,0% | 69,9% | 7,4% | 73,6% | 4,2% | 3A-1 |
28,1% | 5,2% | 12,7% | 3,2% | 0,9% | 20,9% | 29,0% | 34,5% | 8,4% | 15A |
20,9% | 0,7% | 8,5% | 1,0% | 0,0% | 35,8% | 33,0% | 44,3% | 1,7% | 9A-1 |
15,7% | 10,2% | 8,8% | 13,4% | 1,5% | 23,9% | 26,3% | 34,3% | 23,7% | 51B |
16,2% | 11,2% | 7,8% | 16,4% | 1,5% | 20,4% | 26,5% | 29,7% | 27,6% | 8A-1 |
20,5% | 5,5% | 8,6% | 4,8% | 2,7% | 28,7% | 29,2% | 40,0% | 10,3% | 13A-1 |
16,1% | 13,6% | 11,1% | 16,0% | 0,0% | 28,4% | 14,8% | 39,4% | 29,6% | 24B-2 |
16,9% | 7,3% | 16,4% | 6,1% | 0,0% | 40,8% | 12,4% | 57,2% | 13,4% | 24B-1 |
16,2% | 0,0% | 10,9% | 1,0% | 0,0% | 56,5% | 15,5% | 67,4% | 1,0% | 3B |
17,0% | 0,0% | 5,0% | 2,3% | 0,0% | 73,4% | 2,3% | 78,3% | 2,3% | SBG5 |
20,8% | 4,5% | 5,8% | 3,8% | 1,0% | 22,7% | 41,3% | 29,5% | 8,4% | 16B |
19,0% | 14,0% | 8,3% | 18,9% | 0,7% | 23,9% | 15,2% | 32,9% | 32,9% | 6A-1 |
18,0% | 0,3% | 10,1% | 0,0% | 0,0% | 48,9% | 22,7% | 59,0% | 0,3% | 33B |
16,7% | 5,5% | 14,8% | 8,5% | 1,7% | 31,8% | 21,0% | 48,3% | 13,9% | B40 |
15,0% | 1,0% | 11,7% | 2,1% | 0,9% | 62,3% | 6,9% | 74,9% | 3,1% | 28A |
17,8% | 18,5% | 8,1% | 20,5% | 0,0% | 22,1% | 12,9% | 30,2% | 39,0% | 43B |
16,9% | 0,0% | 3,4% | 2,7% | 0,0% | 61,2% | 15,8% | 64,6% | 2,7% | 1A-1 |
15,6% | 2,7% | 11,4% | 10,9% | 0,8% | 53,7% | 4,9% | 65,9% | 13,6% | U41-2 |
16,5% | 0,7% | 3,9% | 3,9% | 0,0% | 68,4% | 6,7% | 72,2% | 4,6% | 56B |
14,4% | 0,9% | 10,9% | 2,5% | 1,0% | 66,4% | 3,8% | 78,3% | 3,4% | 46A |
17,6% | 0,0% | 2,4% | 3,3% | 0,0% | 66,3% | 10,4% | 68,7% | 3,3% | 15A-1 |
25,0% | 0,0% | 3,3% | 0,0% | 1,4% | 53,2% | 17,1% | 57,9% | 0,0% | 13A |
16,1% | 13,4% | 9,3% | 13,6% | 0,0% | 32,3% | 15,3% | 41,6% | 27,0% | 37B |
16,5% | 9,1% | 13,2% | 6,7% | 0,0% | 38,9% | 15,6% | 52,1% | 15,9% | 43B |
16,1% | 12,4% | 12,0% | 15,7% | 0,8% | 30,5% | 12,5% | 43,3% | 28,1% | 17B |
13,8% | 0,8% | 11,5% | 2,8% | 0,0% | 67,0% | 4,1% | 78,6% | 3,6% | 27A |
17,5% | 18,6% | 9,0% | 19,5% | 0,0% | 21,7% | 13,7% | 30,7% | 38,1% | 46B |
21,4% | 1,4% | 18,9% | 0,0% | 5,0% | 43,5% | 9,9% | 67,3% | 1,4% | ATCC20890 |
17,7% | 0,0% | 0,6% | 4,4% | 0,0% | 68,2% | 9,1% | 68,8% | 4,4% | 5A |
17,6% | 16,0% | 9,6% | 18,8% | 0,0% | 25,6% | 12,4% | 35,2% | 34,8% | 28B-2 |
14,0% | 0,9% | 13,2% | 1,6% | 0,0% | 64,7% | 5,5% | 77,9% | 2,6% | 27B |
19,5% | 2,9% | 16,6% | 1,1% | 1,6% | 30,2% | 28,1% | 48,5% | 4,0% | 49B |
17,2% | 0,7% | 6,8% | 2,7% | 0,0% | 63,0% | 9,6% | 69,8% | 3,4% | 18B |
14,4% | 3,5% | 13,5% | 26,0% | 1,0% | 37,2% | 4,4% | 51,6% | 29,5% | S49-2 |
16,1% | 2,2% | 15,7% | 21,6% | 0,0% | 36,7% | 7,8% | 52,4% | 23,7% | 20B |
17,3% | 4,7% | 14,3% | 7,2% | 2,9% | 30,2% | 23,5% | 47,3% | 11,9% | 8B |
11,5% | 3,3% | 11,3% | 6,5% | 1,1% | 59,9% | 6,5% | 72,2% | 9,8% | 13B |
16,6% | 0,7% | 10,7% | 1,6% | 0,0% | 59,7% | 10,8% | 70,4% | 2,2% | 26A |
16,1% | 3,3% | 13,5% | 23,8% | 0,0% | 38,7% | 4,7% | 52,2% | 27,1% | S42 |
15,6% | 0,6% | 12,1% | 0,0% | 0,0% | 60,2% | 11,5% | 72,3% | 0,6% | 35B |
19,5% | 0,0% | 1,4% | 3,4% | 0,0% | 66,6% | 9,1% | 68,0% | 3,4% | 42A |
18,9% | 3,5% | 12,7% | 25,0% | 0,0% | 35,0% | 5,0% | 47,6% | 28,5% | 40A |
25,2% | 3,3% | 9,3% | 21,8% | 0,0% | 30,3% | 10,1% | 39,6% | 25,1% | S50C |
17,6% | 11,1% | 13,2% | 14,1% | 1,3% | 28,7% | 14,0% | 43,2% | 25,2% | 59A |
19,9% | 0,0% | 5,5% | 1,9% | 0,0% | 66,8% | 6,0% | 72,3% | 1,9% | SBG9 |
15,4% | 3,1% | 13,2% | 26,1% | 0,0% | 35,8% | 6,5% | 49,1% | 29,1% | 21B |
Tanto por ciento de ácidos grasos totales | Omega-3 | Omega-6 | Cepa | ||||||
C16:0 | C20:4w6 | C20:5w3 | C22:5w6 | C22:5w3 | C22:6w3 | Otro FA | totales | totales | |
18,9% | 0,7% | 11,6% | 0,0% | 0,0% | 59,1% | 9,7% | 70,7% | 0,7% | 2B |
14,1% | 1,1% | 12,4% | 2,0% | 0,0% | 65,2% | 5,2% | 77,6% | 3,1% | 1B |
22,2% | 16,2% | 6,3% | 17,7% | 0,0% | 18,1% | 19,5% | 24,4% | 33,8% | 55B |
16,0% | 1,0% | 4,5% | 0,0% | 0,0% | 69,5% | 9,0% | 74,0% | 1,0% | 3A |
17,0% | 4,3% | 12,4% | 29,8% | 0,0% | 34,0% | 2,5% | 46,4% | 34,1% | 9B |
15,4% | 4,3% | 8,7% | 13,2% | 0,0% | 53,2% | 5,1% | 62,0% | 17,5% | U24 |
14,2% | 3,1% | 12,0% | 20,0% | 1,1% | 35,2% | 14,3% | 48,3% | 23,2% | U28 |
16,8% | 14,6% | 10,1% | 16,0% | 0,6% | 27,7% | 14,0% | 38,5% | 30,7% | 28B-1 |
23,2% | 1,9% | 8,3% | 1,1% | 2,3% | 22,7% | 40,4% | 33,3% | 3,0% | 44B |
24,6% | 15,8% | 8,7% | 16,0% | 0,0% | 15,3% | 19,6% | 24,0% | 31,8% | 54B |
15,5% | 0,0% | 1,3% | 2,9% | 0,0% | 72,7% | 7,6% | 74,0% | 2,9% | 55A |
18,4% | 1,0% | 5,0% | 3,0% | 0,0% | 66,2% | 6,4% | 71,3% | 3,9% | 49A |
18,6% | 15,3% | 9,4% | 18,0% | 0,0% | 27,3% | 11,4% | 36,7% | 33,3% | 51A |
23,5% | 13,1% | 7,3% | 17,9% | 0,0% | 26,7% | 11,4% | 34,0% | 31,0% | 14A-1 |
13,3% | 1,1% | 14,5% | 0,9% | 0,0% | 64,6% | 5,6% | 79,1% | 2,0% | 25B |
22,9% | 2,4% | 10,3% | 21,5% | 0,0% | 26,5% | 16,4% | 36,9% | 23,9% | 41A |
16,8% | 1,0% | 9,7% | 2,7% | 0,0% | 58,3% | 11,5% | 68,0% | 3,7% | 24A |
0,4% | 8,5% | 14,1% | 10,2% | 2,1% | 27,6% | 37,0% | 43,8% | 18,8% | 61A |
30,5% | 0,0% | 7,1% | 0,0% | 0,0% | 0,6% | 61,8% | 7,7% | 0,0% | BRBG |
18,2% | 14,9% | 8,3% | 18,7% | 0,0% | 24,4% | 15,5% | 32,7% | 33,6% | 17A |
17,4% | 2,0% | 9,3% | 2,8% | 0,0% | 55,7% | 12,7% | 65,0% | 4,9% | 60A |
14,1% | 0,8% | 13,0% | 1,2% | 0,0% | 67,8% | 3,1% | 80,8% | 2,0% | 26B |
17,8% | 5,0% | 6,9% | 15,0% | 1,5% | 47,4% | 6,4% | 55,8% | 20,0% | ATCC20888 |
16,0% | 0,0% | 1,8% | 2,0% | 0,0% | 70,8% | 9,4% | 72,6% | 2,0% | 2A |
24,6% | 0,0% | 4,0% | 0,0% | 0,0% | 49,4% | 22,0% | 53,4% | 0,0% | 44A |
17,4% | 1,8% | 0,0% | 2,9% | 0,0% | 55,3% | 23,3% | 55,3% | 4,6% | 14A |
23,3% | 1,3% | 4,6% | 0,0% | 0,0% | 12,6% | 58,1% | 17,3% | 1,3% | 41B |
19,3% | 0,0% | 1,1% | 3,8% | 0,0% | 66,6% | 9,1% | 67,8% | 3,8% | 66A |
18,6% | 15,6% | 8,3% | 17,1% | 1,1% | 24,6% | 14,8% | 33,9% | 32,7% | 11A |
19,6% | 5,1% | 10,1% | 27,2% | 0,0% | 27,5% | 10,6% | 37,5% | 32,3% | 2X |
15,7% | 2,4% | 14,0% | 25,7% | 0,0% | 36,7% | 5,4% | 50,8% | 28,1% | 33A |
14,6% | 1,5% | 13,5% | 0,0% | 0,0% | 66,0% | 4,3% | 79,5% | 1,5% | ATCC20892 |
Cepas
anteriores
Tanto por ciento de ácidos grasos totales | Omega-3 | Omega-6 | Cepa | ||||||
C16:0 | C20:4w6 | C20:5w3 | C22:5w6 | C22:5w3 | C22:6w3 | Otro FA | totales | totales | |
15,7% | 3,9% | 3,7% | 8,1% | 0,0% | 55,1% | 13,5% | 58,8% | 12,0% | ATCC34304 |
28,2% | 1,6% | 6,9% | 11,4% | 0,0% | 17,8% | 34,1% | 24,7% | 12,9% | ATCC24473 |
15,2% | 2,9% | 7,7% | 9,8% | 0,6% | 54,6% | 9,2% | 62,9% | 12,7% | ATCC28211 |
23,2% | 10,7% | 4,3% | 12,6% | 1,5% | 20,6% | 27,0% | 26,4% | 23,4% | ATCC28209 |
13,2% | 6,3% | 6,9% | 4,3% | 0,0% | 60,1% | 9,1% | 67,0% | 10,6% | ATCC23810 |
EPA | DPA | DHA | Cepa | EPA | DPA | DHA | Cepa | |
C20:5w3 | C22:5w3 | C22:6w3 | C20:5w3 | C22:5w3 | C22:6w3 | |||
44,0% | 1,1% | 54,9% | 21 | 19,8% | 5,8% | 74,4% | 18A | |
4,6% | 0,9% | 94,5% | ATCC20889 | 20,1% | 0,7% | 79,2% | 32B | |
19,3% | 0,7% | 80,0% | U40-2 | 27,8% | 0,0% | 72,2% | 56B | |
31,9% | 0,0% | 68,1% | 21B | 24,1% | 9,1% | 66,9% | SX2 | |
87,9% | 0,0% | 12,1% | BRBG1 | 30,3% | 6,9% | 62,8% | 53B | |
12,5% | 6,1% | 81,5% | 56A | 25,3% | 2,5% | 72,2% | S49 | |
17,0% | 3,7% | 79,3% | 11A-1 | 19,9% | 3,8% | 76,3% | S3 | |
24,9% | 4,3% | 70,8% | 4A-1 | 5,0% | 0,0% | 95,0% | 3A-1 | |
24,4% | 8,4% | 67,2% | 17B | 36,9% | 2,6% | 60,5% | 15A | |
12,2% | 1,5% | 86,3% | ATCC20891 | 19,3% | 0,0% | 80,7% | 9A-1 | |
25,1% | 1,7% | 73,2% | S44 | 25,8% | 4,4% | 69,8% | 51B | |
25,2% | 1,1% | 73,7% | U30 | 26,3% | 5,0% | 68,7% | 8A-1 | |
16,2% | 5,4% | 78,4% | 59A | 21,6% | 6,7% | 71,7% | 13A-1 | |
11,5% | 1,4% | 87,1% | U37-2 | 28,0% | 0,0% | 72,0% | 24B-2 | |
14,0% | 1,9% | 84,2% | S50W | 28,7% | 0,0% | 71,3% | 24B-1 | |
12,7% | 1,3% | 86,0% | ATCC20891 | 16,2% | 0,0% | 83,8% | 3B | |
- - - | - - - | - - - | UX | 6,3% | 0,0% | 93,7% | SBG5 | |
21,0% | 2,9% | 76,1% | LWN9 | 19,7% | 3,3% | 77,0% | 16B | |
13,4% | 1,0% | 85,6% | C32-2 | 25,2% | 2,1% | 72,6% | 6A-1 | |
15,0% | 4,3% | 80,7% | 5A-1 | 17,1% | 0,0% | 82,9% | 33B | |
27,4% | 5,4% | 67,2% | BRBG1 | 30,5% | 3,6% | 65,9% | B40 | |
17,0% | 1,9% | 81,1% | U3 | 15,6% | 1,2% | 83,1% | 28A | |
20,5% | 1,3% | 78,2% | 55B | 26,6% | 0,0% | 73,4% | 40A | |
26,8% | 0,0% | 73,2% | 43B | 23,4% | 0,0% | 76,6% | S50C | |
5,2% | 0,0% | 94,8% | 1A-1 | 30,6% | 2,9% | 66,4% | 59A | |
17,4% | 1,2% | 81,5% | U41-2 | 7,6% | 0,0% | 92,4% | SBG9 | |
5,4% | 0,0% | 94,6% | 56B | 27,0% | 0,0% | 73,0% | 21B | |
13,9% | 1,3% | 84,8% | 46A | 16,4% | 0,0% | 83,6% | 2B | |
3,5% | 0,0% | 96,5% | 15A-1 | 15,9% | 0,0% | 84,1% | 1B | |
5,8% | 2,4% | 91,8% | 13A | 25,9% | 0,0% | 74,1% | 55B | |
22,3% | 0,0% | 77,7% | 37B | 6,0% | 0,0% | 94,0% | 3A | |
25,4% | 0,0% | 74,6% | 43B | 26,7% | 0,0% | 73,3% | 9B | |
27,7% | 1,9% | 70,3% | 17B | 14,1% | 0,0% | 85,9% | U24 | |
14,7% | 0,0% | 85,3% | 27A | 24,9% | 2,2% | 72,9% | U28 | |
29,2% | 0,0% | 70,8% | 46B | 26,4% | 1,5% | 72,1% | 28B-1 | |
28,0% | 7,5% | 64,5% | ATCC20890 | 24,8% | 6,9% | 68,3% | 44B | |
0,9% | 0,0% | 99,1% | 5A | 36,4% | 0,0% | 63,6% | 54B | |
27,3% | 0,0% | 72,7% | 28B-2 | 1,8% | 0,0% | 98,2% | 55A | |
16,9% | 0,0% | 83,1% | 27B | 7,1% | 0,0% | 92,9% | 49A | |
34,3% | 3,4% | 62,3% | 49B | 25,6% | 0,0% | 74,4% | 51A | |
9,7% | 0,0% | 90,3% | 18B | 21,5% | 0,0% | 78,5% | 14A-1 | |
26,1 | 1,9% | 71,9% | S49-2 | 18,4% | 0,0% | 81,6% | 25B | |
29,9% | 0,0% | 70,1% | 20B | 28,1% | 0,0% | 71,9% | 41A | |
30,1% | 6,2% | 63,7% | 8B | 14,3% | 0,0% | 85,7% | 24A | |
15,6% | 1,5% | 82,9% | 13B | 32,3% | 4,8% | 63,0% | 61A | |
15,2% | 0,0% | 84,8% | 26A | 91,6% | 0,0% | 8,4% | BRBG | |
25,9% | 0,0% | 74,1% | S42 | |||||
16,7% | 0,0% | 83,3% | 35B | |||||
2,1% | 0,0% | 97,9% | 42A |
EPA | DPA | DHA | Cepa |
C20:5w3 | C22:5w3 | C22:6w3 | |
25,5% | 0,0% | 74,5% | 17A |
14,4% | 0,0% | 85,6% | 60A |
16,1% | 0,0% | 83,9% | 26B |
12,4% | 2,7% | 84,9% | ATCC20888 |
\hskip5pt 2,5% | 0,0% | 97,5% | 2A |
\hskip5pt 7,5% | 0,0% | 92,5% | 44A |
\hskip5pt 0,0% | 0,0% | 100,0% | 14A |
26,7% | 0,0% | 73,3% | 41B |
\hskip5pt 1,7% | 0,0% | 98,3% | 66A |
24,5% | 3,1% | 72,4% | 11A |
26,8% | 0,0% | 73,2% | 2X |
27,6% | 0,0% | 72,4% | 33A |
17,0% | 0,0% | 83,0% | ATCC20892 |
Cepas
anteriores
EPA | DPA | DHA | Cepa |
C20:5w3 | C22:5w3 | C22:6w3 | |
\hskip5pt 6,4% | 0,0% | 93,6% | ATCC34304 |
27,9% | 0,0% | 72,1% | ATCC24473 |
12,2% | 1,0% | 86,8% | ATCC28211 |
16,4% | 5,6% | 78,1% | ATCC28209 |
10,3% | 0,0% | 89,7% | ATCC28210 |
La Fig. 1 ilustra el conjunto de cepas, aisladas
por el procedimiento del Ejemplo 1, que tienen más del 67% de
ácidos grasos omega-3 (como % de ácidos grasos
totales) y menos del 10,6% de ácidos grasos omega-6
(como % de ácidos grasos totales). Todas las cepas anteriormente
conocidas tienen menos del 67% de ácidos grasos
omega-3 (como % de ácidos grasos totales) y más del
10,6% de omega-6 (como % de ácidos grasos
totales).
La Fig. 2 ilustra el conjunto de cepas, aisladas
por el procedimiento del Ejemplo 1, que tienen más del 67% de
ácidos grasos omega-3 (como % de ácidos grasos
totales) y más del 7,5% de C20:5n-3 (como % de
ácidos grasos totales). Todas las cepas anteriormente conocidas
tienen menos del 67% de ácidos grasos omega-3 (como
% de ácidos grasos totales) y menos del 7,8% de
C20:5n-3 (como % de ácidos grasos totales).
Se seleccionaron células de Schizochytrium
sp. S31 (ATCC nº 20888), Schizochytrium sp. S8 (ATCC nº
20889), Thraustochytrium sp. S42, Thraustochytrium
sp. U42-2, Thraustochytrium sp. S42 y U30,
(aislados todos por el procedimiento del Ejemplo 1) y
Thraustochytrium aureum (ATCC nº 28211) y Schizochytrium
aggregatum (ATCC nº 28209) (cepas anteriormente conocidas)
procedentes del medio sólido F-1 y se colocaron en
50 ml de medio M-5. Se ajustó el pH de la solución a
7,0 y se filtró la solución esterilizada. Después de tres días de
cultivo en un agitador orbital (200 rpm, 27ºC), se transfirieron 1
a 2 ml de cada cultivo a otro matraz de medio M-5 y
se colocaron en el agitador durante 2 días. Los cultivos (1 a 2 ml)
se transfirieron a continuación a otro matraz con medio
M-5 y se colocaron en el agitador durante 1 día.
Este procedimiento aseguró que todos los cultivos estaban en la
fase exponencial de crecimiento. Estos últimos cultivos se
utilizaron a continuación para inocular dos matraces de 250 ml con
medio M-5 para cada cepa. Estos matraces se
colocaron a continuación en agitadores a 25ºC y a 30ºC y se
controlaron los cambios de su densidad óptica en un
espectrofotómetro Beckman DB-G (660 nm, longitud de
paso 1 cm). Se tomaron las lecturas de densidad óptica en los
periodos siguientes: 0, 6, 10, 14, 17,25, 20,25 y 22,75 horas. Se
calcularon a continuación los índices de crecimiento exponencial
(duplicados/día) para los datos de densidad óptica por el
procedimiento de Sorokin (1973). Los resultados se presentan en la
Tabla 4 y se ilustran (normalizados al crecimiento de la cepa U30 a
25ºC) en la Fig. 4. Los datos indican que las cepas aisladas por el
procedimiento del Ejemplo 1 tienen índices de crecimiento muy
superiores a los de las cepas ATCC anteriormente conocidas tanto a
25ºC como a 30ºC, aún bajo las cantidades de fosfato optimizadas
esenciales en el crecimiento continuo. Las cepas de
Traustoquitriales aisladas en las aguas antárticas frías no se ha
demostrado que crezcan a 30ºC.
Cepa | 25ºC | 30ºC |
S31* (ATCC nº 20888) | 8,5 | 9,4 |
U40-2* | 5,8 | 6,0 |
S8* (ATCC nº 20889) | 7,1 | 8,8 |
S42* | 6,6 | 8,3 |
U30 | 5,5 | 7,3 |
28209** | 4,6 | 5,0 |
28210** | 3,5 | 4,5 |
28211** | 4,2 | 5,7 |
34304** | 2,7 | 3,7 |
24473** | 4,6 | 5,3 |
*cepa aislada por el procedimiento del Ejemplo 1 | ||
**cepa ATCC previamente conocida |
Se seleccionaron células de Schizochytrium
sp. S31 (ATCC nº 20888), Schizochytrium sp. S8 (ATCC nº
20889) (aislados ambas por el procedimiento del Ejemplo 1),
Thraustochytrium aureum (ATCC nº 28211) y
Schizochytrium aggregatum (ATCC nº 28209) (cepas de la
técnica anterior) procedentes del medio sólido F-1 y
se colocaron en 50 ml de medio M-5 (véase Ejemplo
3). Se ajustó el pH de la solución a 7,0 y se filtró la solución
esterilizada. Después de tres días de cultivo en un agitador orbital
(200 rpm, 27ºC), se transfirieron 1 a 2 ml de cada cultivo a otro
matraz de medio M-5 y se colocaron en el agitador
durante 2 días. Se determinaron a continuación rápidamente los
pesos en seco sin cenizas de cada uno de estos cultivos y a
continuación se pipetearon 3,29 mg de cada cultivo en dos matraces
erlenmeyer de 250 ml conteniendo 50 ml de medio M-5.
Estos matraces se colocaron a continuación en un agitador rotatorio
(200 rpm, 27ºC). Después de 24 horas se centrifugaron a
continuación porciones de 20 ml de cada cultivo, se descartaron los
sobrenadantes y se transfirieron las células a matraces erlenmeyer
de 250 ml conteniendo 50 ml de medio M-5 sin ningún
glutamato (fuente de N). Se volvieron a colocar los matraces en el
agitador y después de otras 12 horas se tomaron muestras para
determinar los pesos en seco sin cenizas y cuantificar el contenido
en ácido graso por el procedimiento de Lepage y Roy (1984). Los
resultados se ilustran (normalizados a los rendimientos de ATCC nº
28211, cepa anteriormente conocida) en la Fig. 5. Los resultados
indican que las cepas aisladas por el procedimiento del Ejemplo 1
produjeron 2 a 3 veces como mucho el peso en seco sin cenizas en el
mismo periodo de tiempo, en una combinación de crecimiento
exponencial y limitación de nitrógeno (para producción de lípido)
como las cepas ATCC de la técnica anterior. Además, se obtuvieron
rendimientos superiores de ácidos grasos totales y de ácidos grasos
omega-3 de las cepas de la presente invención con
cepas S31 (ATCC nº 20888) que producen 3 a 4 veces como mucho ácidos
grasos omega-3 como las cepas ATCC de la técnica
anterior.
Las cepas de 4 especies de Traustoquítridos,
Schizochytrium sp. S31 (ATCC nº 20888), y
Thraustochytrium sp. U42-2 (ATCC nº 20891)
(aislados ambas por el procedimiento del Ejemplo 1) y S.
aggregatum (ATCC 28209) y T. aureum (ATCC 28210)
(obtenidos a partir de la American Type Culture Collection)
se seleccionaron de entre el medio sólido F-1
y se incubaron durante 3 a 4 días a 27ºC en un agitador
rotatorio (200 rpm). Se preparó un intervalo de diferenciación de
salinidad del medio haciendo las siguientes diluciones de las sales
del medio M (NaCl, 25 g/l; MgSO_{4}\cdot7H_{2}O, 5 g/l; KCl,
1 g/l; CaCl_{2}, 200 mg/l: 1) 100% (p/v) sales del medio M en; 2)
80% (v/v) medio M, 20% (v/v) agua destilada; 3) 60% (v/v) medio M,
40% (v/v) agua destilada; 4) 40% (v/v) medio M, 60% (v/v) agua
destilada; 5) 20% (v/v) medio M, 80% (v/v) agua destilada; 6) 15%
(v/v) medio M, 85% (v/v) agua destilada; 7) 10% (v/v) medio M, 90%
(v/v) agua destilada; 8) 7% (v/v) medio M, 93% (v/v) agua
destilada; 9) 3% (v/v) medio M, 97% (v/v) agua destilada; 10) 1,5%
(v/v) medio M, 98,5% (v/v) agua destilada. Se añadieron los
siguientes nutrientes a los tratamientos (por litro): glucosa, 5 g;
glutamato, 5 g; extracto de levadura, 1 g;
(NH_{4})_{2}SO_{4}, 200 mg; NaHCO_{3}, 200 mg;
metales PII, 5 ml; solución de vitaminas A, 1 ml y solución de
antibióticos, 2 ml. Se inocularon cincuenta ml de cada uno de estos
tratamientos con 1 ml de cultivo de las células en el medio
F-1. Estos cultivos se colocaron en un agitador
orbital (200 rpm) y se mantuvieron a 27ºC durante 48 h. Se
recogieron las células por centrifugación y se determinaron los
ácidos grasos totales por cromatografía de gases. Los resultados se
ilustran en la Fig. 6. Thraustochytrium sp.
U42-2 (ATCC nº 20891) aislada por el procedimiento
del Ejemplo 1 puede rendir casi dos veces la cantidad de ácidos
grasos producidos por T. aureum (ATCC 28211) y por encima de
8 veces la cantidad de ácidos grasos producida por S.
aggregatum (ATCC 28209). Adicionalmente, U42-2
parece tener una tolerancia a la salinidad mayor en el extremo
superior del intervalo de salinidad evaluado. Schizochytrium
sp. S31 (ATCC nº 20888), aislado también por el procedimiento del
Ejemplo 1, presentó tanto un alto rendimiento en ácido graso (2,5 a
10 veces el de las cepas ATCC anteriormente conocidas) como un
intervalo mucho mayor de tolerancia a la salinidad que las cepas
ATCC. Adicionalmente, Schizochytrium sp. S31 (ATCC nº 20888)
se desarrolla mejor a muy bajas salinidades. Esta propiedad
proporciona una fuerte ventaja económica al considerar la
producción comercial, tanto debido a los efectos corrosivos de las
aguas salinas sobre los reactores metálicos, como debido a los
problemas relacionados con el vertido de las aguas salinas.
Se inocularon cincuenta ml de medio de cultivo
M/10-5 en un matraz erlenmeyer de 250 ml en una
colonia de Schizochytrium sp. S31 (ATCC nº 20888)
seleccionada de entre una diagonal en agar. El medio
M/10-5 contiene: 1000 ml de agua desionizada, 2,5 g
de NaCl, 0,5 de MgSO_{4}\cdot7H_{2}O, 0,1 g de KCl, 0,02 g de
CaCl_{2}, 1,0 g de KH_{2}PO_{4}, 1,0 g de extracto de
levadura, 5,0 g de glucosa, 5,0 g de ácido glutámico, 0,2 g de
NaHCO_{3}; 5 ml metales en trazas PII, 2 ml de mezclas de
vitaminas y 2 ml de mezcla de antibióticos. El cultivo se incubó a
30ºC en un agitador rotatorio (200 rpm). Después de 2 días el
cultivo tenía una densidad moderada y estaba creciendo activamente.
Se utilizó 20 ml de este cultivo creciendo activamente para
inocular un fermentador de 2 litros conteniendo 1700 ml del
mismo medio de cultivo excepto que la concentración de la glucosa y
del glutamato se habían aumentado a 40 g/l (medio
M/10-40). El fermentador se mantuvo a 30ºC, con
aireación a 1 vol/vol/min y mezclando a 300 rpm. Después de 48 h, la
concentración de las células en el fermentador fue de 21,7 g/l. Las
células se recogieron por centrifugación, se liofilizaron y se
almacenaron en N_{2}.
El contenido en ácido graso total y el contenido
en ácido graso omega-3 se determinó por
cromatografía de gases. El contenido en ácido graso total del
producto final fue de 39,0% de peso en seco sin cenizas. El
contenido en HUFA omega-3 (C20:5n-3,
C22:5n-3 y C22:6n-3) del producto
microbiano fue del 25,6% del contenido de ácido graso total. El
contenido de cenizas de la muestra fue del 7,0%.
El cultivo y el análisis cromatográfico de gases
de la producción de ácidos grasos para varias cepas como las
descritas en el Ejemplo 4 puso de manifiesto las diferencias en la
diversidad de ácidos grasos. Las cepas de la presente invención
sintetizaron menos ácidos grasos diferentes que las cepas
disponibles anteriormente. La diversidad inferior de los ácidos
grasos es una ventaja en la purificación del ácido graso ya que
existen pocas impurezas para separar. Con fines de complemento
alimenticio, menos ácidos grasos diferentes es ventajoso debido a
que disminuye la probabilidad de ingerir ácidos grasos indeseables.
La Tabla 5 muestra el número de HUFA diferentes presentes, en
concentraciones mayores del 1% en peso de los ácidos grasos totales
para cepas anteriormente conocidas, denominadas por el número ATCC
y para cepas de la presente invención.
(Tabla pasa a la página
siguiente)
Cepa | Nº de ácidos grasos diferentes en 1% |
ó % mayor de ácidos grasos totales | |
34304** | 8 |
28211** | 8 |
24473** | 10 |
28209** | 13 |
28210** | 8 |
S31* | 5 |
S8* | 6 |
79B* | 6 |
* cepa aislada por el procedimiento del Ejemplo 1 | |
**cepa ATCC anteriormente conocida |
Se inocularon cincuenta ml de medios de cultivo
M5 en un matraz erlenmeyer de 250 ml con una colonia de
Schizochytrium sp. S31 (ATCC nº 20888) seleccionada de entre
una diagonal en agar. El cultivo se incubó a 30ºC en un agitador
rotatorio (200 rpm). Después de 2 días el cultivo tenía una
densidad moderada y estaba creciendo activamente. Se utilizó 20 ml
de este cultivo creciendo activamente para inocular un fermentador
de 1 litro conteniendo 1000 ml del mismo medio de cultivo excepto
que la concentración de la glucosa y del glutamato se habían
aumentado a 40 g/l (medio M/20). El fermentador se mantuvo a
30ºC y pH 7,4, con aireación a 1 vol/min y mezclando a 400 rpm.
Después de 48 h, la concentración de las células en el fermentador
fue de 18,5 g/l. La aireación y la mezcla en el fermentador se
suspendió. A lo largo de 2 a 4 minutos, las células flocularon y
sedimentaron en los 250 ml del fondo del sedimentador. Esta zona
concentrada de células tiene una concentración de células de 72 g/l.
Esta zona de células se puede sifonar desde el fermentador, y: (1)
transferir a otro reactor durante un periodo de limitación de
nitrógeno (p. ej.: mezclando la producción muy concentrada de
varios fermentadores); ó (2) recoger directamente por centrifugación
o filtración. Preconcentrando las células de esta manera, se ha de
procesar del 60 al 80% menos de agua para recuperar las
células.
Se inocularon cincuenta ml de medio de cultivo M5
en un matraz erlenmeyer de 250 ml con una colonia de
Schizochytrium sp. S31 (ATCC nº 20888) o
Thraustochytrium sp. U42-2 (ATCC nº 20891)
seleccionada de entre una diagonal en agar. El medio M5 se
describió en el Ejemplo 3 excepto para la adición de 2 ml de mezcla
de vitaminas y 2 ml de mezclas de antibióticos. El cultivo se
incubó a 30ºC en un agitador rotatorio (200 rpm). Después de 2 días
el cultivo tenía una densidad moderada y estaba desarrollándose
activamente. Este cultivo se utilizó para inocular matraces de medio
M5 con uno de los siguientes sustitutos de glucosa (a 5 g/l):
dextrina, sorbitol, fructosa, lactosa, maltosa, sacarosa, almidón
de maíz, almidón de trigo, almidón de patata, maíz molido; o uno de
los siguientes sustitutos del glutamato (a 5 g/l): gelisato,
peptona, triptona, caseína, licor de trigo macerado, urea, nitrato,
amonio, suero o harina de gluten de maíz. Se incubaron los cultivos
durante 48 horas en un agitador rotatorio (200 rpm, 27ºC). Las
densidades de cultivo relativas, que representan el crecimiento en
los diferentes substratos orgánicos, se ilustran en las Tablas 6 y
7.
(Tabla pasa a la página
siguiente)
Fuente de nitrógeno | Cepas | |
Thraustochytrium | Schizochytrium | |
sp. U42-2 ATCC nº 20891 | sp. S31 ATCC nº 20888 | |
glutamato | +++ | +++ |
gelisato | +++ | +++ |
peptona | ++ | ++ |
triptona | ++ | ++ |
caseína | ++ | ++ |
licor de trigo macerado | +++ | +++ |
urea | + | ++ |
nitrato | ++ | +++ |
amonio | + | +++ |
suero | +++ | +++ |
harina de gluten de maíz | +++ | +++ |
+++ = crecimiento elevado | ||
++ = crecimiento medio | ||
+ = crecimiento bajo | ||
0 = sin crecimiento |
Fuente de carbono | Cepas | |
Thraustochytrium sp. | Schizochytrium | |
U42-2 ATCC nº 20891 | sp. S31 ATCC nº 20888 | |
glucosa | +++ | +++ |
dextrina | +++ | +++ |
sorbitol | + | + |
fructosa | + | +++ |
lactosa | + | + |
maltosa | +++ | + |
sacarosa | + | + |
almidón de maíz | +++ | + |
almidón de trigo | +++ | + |
almidón de patata | +++ | + |
maíz molido | +++ | 0 |
+++ = crecimiento elevado | ||
++ = crecimiento medio | ||
+ = crecimiento bajo | ||
0 = sin crecimiento |
Se produjo biomasa celular de
Thraustochytrium sp. 12B (ATCC 20890) en matraces de
agitación en medio M-5 (véase Ejemplo 3) a 25ºC. Se
produjo biomasa celular de Thraustochytrium sp. S31 (ATCC
20888) en matraces de agitación en medio M/10-5
(véase Ejemplo 8) a 27ºC. Se recogieron las células de cada cepa por
centrifugación. El precipitado se lavó una vez con agua destilada y
se volvió a centrifugar para producir una pasta de sólidos del 50%.
La pasta resultante se volvió a poner en suspensión en agua de mar
y a continuación se añadió a un cultivo adulto de gambas de salmuera
como complemento alimenticio. Las gambas de salmuera se han
destacado anteriormente sobre los productos residuales agrícolas y
como resultado su contenido en HUFA omega-3 fue muy
bajo, solamente el 1,3 al 2,3% de los ácidos grasos totales (la
gamba de salmuera pescada en su medio natural tiene un contenido
medio en HUFA omega-3 del 6 al 8% total
de ácidos grasos). Se mantuvieron gambas de salmuera (2 a 3 mg/ml)
en un vaso de precipitados de 1 litro lleno con agua de mar y se
utilizó una piedra porosa para airear la mezcla del cultivo. Después
de la adición del complemento alimenticio, se recogieron muestras
de gamba de salmuera periódicamente, se lavaron y se determinó su
contenido en ácidos grasos por cromatografía de gases. Los
resultados se ilustran en la Figs. 7 y 8. Cuando se alimenta el
complemento alimenticio con traustoquítrido como alimento de
acabado, el contenido en HUFA omega-3 de la gamba de
salmuera se puede aumentar hasta el de la gamba de salmuera natural
en 5 horas si se alimenta la cepa 12B o en 11 horas cuando se
alimenta la cepa S31. El contenido en HUFA omega-3
de la gamba de salmuera se puede aumentar en gran medida por encima
del de tipo natural si se alimentan estos complementos alimenticios
durante hasta 24 horas. Adicionalmente, estos complementos
alimenticios aumentan en gran medida el contenido de DHA de la
gamba de salmuera, que se presenta generalmente sólo en
concentraciones de trazas en la gamba de salmuera pescada en su
medio natural.
Este ejemplo ilustra que la producción de
omega-3 y el contenido total de ácidos grasos no
perjudica y puede ser la misma o mejor al utilizar sulfato de sodio
en lugar de cloruro de sodio como sal de sodio en un medio de
fermentación.
Se cultivó Schizochytrium ATCC nº 20888 en
un medio, pH 7,0, conteniendo 2,36 gramos de sodio por litro de
medio, 1,5 a 3,0 gramos de una fuente de nitrógeno por litro de
medio y 3,0 gramos de glucosa por litro de medio. Se incubaron las
células a 28ºC, a 200 rotaciones por minuto, durante 48 horas. Los
resultados se muestran en la Tabla 8.
Ácidos grasos | Rendimiento en | ||
Fuente de N | Omega-3 | totales | biomasa |
(g/l) | (% peso en seco) | (% peso en seco) | (g/l) |
3,0 | 6,0 | 11,2 | 1,74 |
2,5 | 5,8 | 10,8 | 1,71 |
2,0 | 5,8 | 11,0 | 1,65 |
1,5 | 7,5 | 20,3 | 1,39 |
Ácidos grasos | Rendimiento en | ||
Fuente de N | Omega-3 | totales | biomasa |
(g/l) | (% peso en seco) | (% peso en seco) | (g/l) |
3,0 | 7,9 | 21,9 | 1,34 |
2,5 | 9,4 | 27,4 | 1,21 |
2,0 | 6,7 | 28,9 | 1,18 |
1,5 | 11,1 | 42,1 | 1,16 |
Ácidos grasos | Rendimiento en | ||
Fuente de N | Omega-3 | totales | biomasa |
(g/l) | (% peso en seco) | (% peso en seco) | (g/l) |
3.0 | 9.3 | 31.9 | 1.34 |
2.5 | 10.1 | 38.6 | 1.35 |
2.0 | 10.1 | 41.4 | 1.30 |
1.5 | 9.5 | 43.6 | 1.26 |
Como se aprecia en la Tabla 8, la producción de
omega-3 y de ácidos grasos totales cuando se
utiliza sulfato de sodio es comparable a o mejor que cuando se
utiliza cloruro de sodio como sal de sodio.
Este Ejemplo ilustra la fermentación de
Schizochytrium en un medio de cultivo de baja salinidad mientras se
mantienen rendimientos de biomasa elevados y producción elevada de
omega-3 y ácidos grasos.
Se cultivó Schizochytrium ATCC nº 20888 en
un medio, conteniendo 3,33 g/l de peptona como fuente de nitrógeno,
5,0 g/l de glucosa como fuente de carbono, con concentraciones de
sodio variables. Las células se fermentaron a 30ºC con un inóculo
de aproximadamente 40 mg/l en peso en seco durante un periodo de 48
horas. Se aportó sodio como cloruro de sodio. Los resultados de
esta prueba se muestran en la Tabla 9.
Rendimiento | Ácidos | Omega-3 | Glucosa | ||
Conc. de Na | Conc. de Cl | en biomasa | grasos | % peso en | final |
g/l | g/l | g/l | % peso en | seco | g/l |
seco | |||||
4,88 | 7,12 | 1,76 \pm 0,60 | 35,4 \pm 1,0 | 10,2 \pm 0,6 | 0,00 |
3,90 | 5,70 | 1,72 \pm 0,67 | 37,0 \pm 0,7 | 11,1 \pm 0,3 | 0,15 |
2,93 | 4,27 | 1,70 \pm 0,42 | 43,0 \pm 0,2 | 12,1 \pm 0,1 | 0,22 |
1,95 | 2,85 | 1,66 \pm 0,57 | 29,8 \pm 0,7 | 9,3 \pm 0,1 | 1,55 |
0,98 | 1,42 | 0,40 \pm 0,61 | 10,6 \pm 2,4 | 4,0 \pm 1,0 | 4,31 |
Como se puede apreciar a partir de los resultados
de la Tabla 9, los rendimientos elevados de biomasa y la producción
de ácidos grasos omega-3 y de ácidos grasos totales
se pueden conseguir a concentraciones de sodio mayores de
aproximadamente 1,0 g/l.
Este Ejemplo ilustra la fermentación de la
microflora de la presente invención a concentraciones mínimas de
cloruro aunque consiguiendo rendimientos elevados en biomasa en
relación con la concentración de azúcar de partida.
Se cultivó Schizochytrium ATCC nº 20888 en
matraces de agitación a 200 rpm y 28ºC en alícuotas de 50 ml del
medio siguiente: 1000 ml de agua desionizada; 1,2 g de
MgSO_{4}\cdot7H_{2}O; 0,067 g de CaCO_{3}; 3,0 g de glucosa;
3,0 g de glutamato monosódico; 0,2 g de KH_{2}PO_{4}; 0,4 g de
extracto de levadura; 5,0 ml de metales PII; 1,0 ml de mezcla de
vitaminas y 0,1 g de penicilina-G y 0,1 g de sulfato
de estreptomicina. La concentración de cloruro se varió añadiendo
diferentes cantidades de KCl a cada tratamiento. La concentración
de potasio en todos los tratamientos se mantuvo constante mediante
adiciones de citrato de potasio. La concentración de sodio fue 2,37
g/l ó 4,0 g/l mediante adición de sulfato de sodio. Los resultados
de estas fermentaciones se muestran a continuación en la Tabla
10.
Rendimiento en biomasa | Rendimiento en biomasa | |
Conc. de cloruro | con 2,37 g/l de Na | con 4,0 g/l de Na |
(mg/l) | (mg/l) | (mg/l) |
0,1 | 198 \pm 21 | 158 \pm 48 |
7,1 | 545 \pm 120 | 394 \pm 151 |
15,1 | 975 \pm 21 | 758 \pm 163 |
30,1 | 1140 \pm 99 | 930 \pm 64 |
59,1 | 1713 \pm 18 | 1650 \pm 14 |
119,1 | 1863 \pm 53 | 1663 \pm 46 |
238,1 | 1913 \pm 11 | 1643 \pm 39 |
Como se puede apreciar a partir de los resultados
mostrados en la Tabla 10, se pueden conseguir rendimientos elevados
de biomasa para azúcar a baja concentraciones de cloruro. Por
ejemplo, a una concentración de cloruro mayor de 59,1 mg/l, se
pueden conseguir rendimientos mayores del 50%.
Este Ejemplo ilustra el efecto de la variación de
la concentración de sulfato de sodio en una fermentación a baja
concentración de cloruros.
Se cultivó Schizochytrium ATCC nº 20888 en
matraces de agitación a 200 rpm y 28ºC en alícuotas de 50 ml del
medio siguiente: 1000 ml de agua desionizada; 1,2 g de
MgSO_{4}\cdot7H_{2}O; 0,125 g de KCl; 0,067 g de CaCO_{3};
3,0 g de glucosa; 3,0 g de glutamato monosódico; 0,2 g de
KH_{2}PO_{4}; 0,4 g de extracto de levadura; 5,0 ml de metales
PII; 1,0 ml de mezcla de vitaminas; 0,1 g de
penicilina-G y 0,1 g de sulfato de estreptomicina.
La concentración de sulfato de sodio se varió en los tratamientos
desde 3,0 g/l a 30,2 g/l. Los resultados de las pruebas de
fermentación se muestran a continuación en la Tabla 11.
Sulfato de sodio | Rendimiento en biomasa |
(g/l) | (g/l) |
3,0 | 0,78 |
6,0 | 1,13 |
9,1 | 1,72 |
12,1 | 1,88 |
15,1 | 1,89 |
22,7 | 1,91 |
30,2 | 1,63 |
Los resultados mostrados en la Tabla 11, ilustran
que a una baja concentración de cloruros de aproximadamente 59
mg/l, se pueden obtener rendimientos elevados en biomasa de glucosa
mayores del 50% mediante selección de una concentración apropiada de
sulfato de sodio.
Claims (20)
1. Procedimiento para el cultivo de
Thraustochytrium, Schizochytrium y/o mezclas de las mismas,
que comprende el cultivo de dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, en un medio de cultivo
que no contiene una sal de cloruro de sodio y que tiene menos de
500 miligramos de cloruro por litro de dicho medio de cultivo.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, que
comprende el cultivo de dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, a una temperatura de
5ºC a 48ºC y a un pH de 5,0 a 11,0.
3. Procedimiento según la reivindicación 1, en el
que dicha sal de sodio se selecciona de entre sulfato de sodio,
ceniza de sosa, óxido de sodio, carbonato de sodio, bicarbonato de
sodio, sulfato de sodio y mezclas de éstos.
4. Procedimiento según la reivindicación 3, en el
que la concentración de dicho sulfato de sodio, expresada en gramos
de sodio por litro de dicho medio de cultivo, es mayor de 1,0.
5. Procedimiento según la reivindicación 3, en el
que la concentración de dicho sulfato de sodio, expresada en gramos
de sodio por litro de dicho medio de cultivo, está comprendida
entre 1,0 y 50,0.
6. Procedimiento según la reivindicación 3, en el
que la concentración de dicho sulfato de sodio, expresada en gramos
de sodio por litro de dicho medio de cultivo, está comprendida 2,0
y 25,0.
7. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, poseen todas
características identificativas de un microorganismo biológicamente
puro seleccionado de entre ATCC nº 20888 y nº 20889 y cepas
mutantes procedentes de un microorganismo seleccionado de entre ATCC
nº 20888 y nº 20889 y que tienen un contenido en ácido graso muy
insaturado omega-3 de por lo menos el 0,5% en peso
en seco.
8. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, poseen un contenido
en esterol de por lo menos el 0,1% en peso en seco sin cenizas.
9. Procedimiento según la reivindicación 8, en el
que Thraustochytrium, Schizochytrium y/o mezclas de las
mismas, poseen un contenido en colesterol de plásmido el 15% del
contenido total de esterol.
10. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, poseen un tamaño del
agregado celular menor de 150 \mu (150 micras) de diámetro.
11. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, poseen un tamaño del
agregado celular menor de 100 \mu (100 micras) de diámetro.
12. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas, poseen un tamaño del
agregado celular menor de 50 \mu (50 micras) de diámetro.
13. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que dicho medio de cultivo tiene
una concentración de cloruros menor de 250 miligramos de cloruro
por litro de medio de cultivo.
14. Biomasa de microflora cultivada por el
procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13, que
comprende Thraustochytrium, Schizochytrium y/o mezclas de
las mismas, en las que dichas Thraustochytrium,
Schizochytrium y/o mezclas de las mismas tienen un tamaño de
agregado celular menor de 150 \mu (150 micras).
15. Procedimiento para producir gambas que
comprende alimentar larvas de gambas con el cultivo de microflora
por el procedimiento de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13,
seleccionado de entre Thraustochytrium, Schizochytrium y/o
mezclas de las mismas, teniendo dicha microflora un tamaño de
agregado celular menor de 150 \mu (150 micras).
16. Producto alimenticio, que comprende:
- (a)
- un cultivo de microflora por el procedimiento de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 seleccionado de entre Thraustochytrium, Schizochytrium y/o mezclas de las mismas; y
- (b)
- un nutriente seleccionado de entre linaza, rabina, soja, harina de aguacate y mezclas de las mismas.
17. Producto alimenticio según la reivindicación
16, en el que dicha composición comprende entre el 5% y el 95% en
peso de dicha microflora.
\newpage
18. Producto alimenticio según cualquiera de las
reivindicaciones 16 y 17, en el que dicha composición comprende
entre el 5% y el 95% en peso de dicho material seleccionado de
entre linaza, soja, harina de aguacate y mezclas de las mismas.
19. Producto alimenticio según cualquiera de las
reivindicaciones 16 a 18, en el que dicho producto alimenticio es
un producto extruido.
20. Procedimiento de acuicultura que comprende
alimentar el cultivo de microflora por un procedimiento según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13, seleccionado de entre
Thraustochytrium, Schizochytrium y/o mezclas de las mismas a
organismos seleccionados de entre larvas de gamba, gambas de
salmuera, rotíferos y moluscos, poseyendo dicha microflora un
tamaño de agregado celular menor de 150 \mu (150 micras).
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