KR20180027584A - 크실로오스의 미세조류 대사를 강화시키는 방법 - Google Patents
크실로오스의 미세조류 대사를 강화시키는 방법 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 크실로오스 이성화효소(xylose isomerase)를 인코딩하는 핵산 서열의 2 개 이상의 복사체(copy)를 갖는 재조합(recombinant) 미생물에 관한 것으로서, 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산은 외인성(exogenous) 핵산이다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 크실룰로오스(xylulose) 키나제(kinase)를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 및/또는 크실로오스 전달체(transporter)를 인코딩하는 하나 이상의 핵산을 함유한다. 상기 재조합 미생물은 크실로오스를 탄소원(carbon source)으로 하여 성장할 수 있다.
Description
관련 출원에 대한 상호참조
본 출원은 2015년 7월 13일자 출원된 미국 가출원 제62/191,983호 및 2016년 6월 24일자 출원된 미국 가출원 제62/354,444호를 우선권 주장하며, 이들 출원은 이들 전문이 본원에 참고자료로 편입된다.
미생물의 이종영양성 발효(heterotrophic fermentation)는 고 부가가치의 오일 및 바이오매스(biomass) 생성물을 생산하는 효율적인 방법이다. 특정 재배 조건 하에서, 미생물은 세포내 오일을 합성하고, 이 오일은 추출되어 연료(가령, 바이오디젤, 바이오-제트 연료 및 등등) 및 영양성 지질(가령, 다중불포화 지방산, 이를 테면 DHA, EPA, 및 DPA)을 만드는데 사용될 수 있다. 일부 미생물의 바이오매스는 높은 다중불포화 지방산(PUFA)과 단백질 함량으로 인하여, 영양 가치가 높아 동물 사료용 영양 보충제로 사용될 수 있다. 트라우스토키트리드(Thraustochytrid)는 진핵성 단세포 미생물로서, 이러한 발효 과정에서 지질 생산에 사용될 수 있다. 트라우스토키트리드를 이용한 이종영양성 발효로 성장 배지에 제공된 유기 탄소를 지질로 전환시키고, 이는 발효 공정의 끝에서 바이오매스로부터 수확된다. 그러나, 기존의 미생물 발효는 탄소원으로서 포도당과 같은 고가의 탄수화물을 주로 사용한다.
본원에서 크실로오스 이성화효소(xylose isomerase)를 인코딩하는 핵산 서열의 2 개 이상의 복사체(copy)를 갖는 재조합(recombinant) 미생물을 제공하며, 여기에서 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산은 외인성(exogenous) 핵산이다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 크실룰로오스(xylulose) 키나제(kinase)를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 및/또는 크실로오스 전달체(transporter)를 인코딩하는 하나 이상의 핵산을 함유한다. 상기 제공된 재조합 미생물은 크실로오스를 탄소원(carbon source)으로 하여 성장할 수 있다.
도 1은 크실로오스 대사 경로를 도시한 것이다.
도 2는 포도당 고갈(starvation) 주기 동안 WT ONC-T18에서 크실로오스 이성화효소의 발현을 나타내는 그래프이다.
도 3은 포도당 고갈 주기 동안 WT ONC-T18에서 추정 크실룰로오스 키나제의 발현을 나타내는 그래프이다.
도 4는 알파-튜블린 ble-이성화효소 플라스미드 구조체를 도식적으로 보여준다.
도 5는 알파-튜블린 hygro-xylB 플라스미드 구조체를 도식적으로 보여준다.
도 6은 알파-튜블린 프로모터 ble 서열 2A 서열 크실로오스 이성화효소 서열 그리고 알파-튜블린 터미네이터(terminator)를 갖는 핵산 구조체를 도식적으로 보여준다.
도 7은 재조합 ONC-T18 균주 "6" 및 "16" 안에 크실로오스 이성화효소 His-태깅된 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏(Southern blot)의 이미지이다.
도 8은 재조합 ONC-T18 균주에서 다수의 크실로오스 이성화효소 His-태깅된 유전자 삽입체들의 qPCR 결정(determination)을 보여주는 그래프이다.
도 9는 그래프에서 "7-3" 및 "7-7"로 지칭된 크실로오스 이성화효소와 크실룰로오스 키나제 둘 모두를 함유하는 재조합 ONC-T18 균주안에서 xylB 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏의 이미지이다.
도 10은 재조합 7-3 및 7-7 ONC-T18 균주에서 다수의 xylB 유전자 삽입체들의 qPCR 결정을 보여주는 그래프이다.
도 11은 재조합 ONC-T18 균주 "6" 및 "16"에서 크실로오스 이성화효소 유전자 전사체의 발현을 보여주는 그래프이다.
도 12는 Wt ONC-T18 및 재조합 ONC-T18 균주 "6" 및 "16"에서 시험관내 크실로오스 이성화효소 활성을 보여주는 그래프이다.
도 13은 오직 크실로오스 이성화효소만을 인코딩하는 재조합 ONC-T18 균주 "16" 그리고 크실로오스 이성화효소와 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 재조합 ONC-T18 균주 "7-3" 및 "7-7"의 시험관내 복합된 크실로오스 이성화효소와 크실룰로오스 키나제 활성을 보여주는 그래프이다.
도 14a 및 14b는 재조합 ONC-T18 균주 "16"(사각형)에서 크실로오스 흡수 개선과 감소된 크실리톨 생산을 보여주는 그래프이다. 야생형(WT) 균주는 다이아몬드로 표시된다.
도 15a 및 15b는 재조합 ONC-T18 균주 "16"(사각형) 및 재조합 ONC-T18 균주 "7-3"(삼각형) 및 "7-7"(별표)에서 크실로오스 사용 개선 및 감소된 크실리톨 생산을 나타내는 그래프이다. 야생형(WT) 균주는 다이아몬드로 표시된다.
도 16은 재조합 ONC-T18 균주 "16" 및 재조합 ONC-T18 균주 "7-7"을 이용하여 포도당:크실로오스 발효 동안 크실리톨의 축적을 보여주는 그래프이다.
도 17은 ONC-T18의 형질전환(transformation)에 이용된 다양한 형태의 구조체를 도시한다.
도 18은 대장균(Escherichia coli)(서열번호 20)의 xylB 서열과 코돈 최적화된 형태의 대장균 xylB(서열번호 5)의 정렬을 보여주는 그래프이다.
도 19a, 19b 및 19c는 크실로오스 사용(도 19a), 포도당 사용(도 19b) 그리고 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 및 당 전달체 Gxs1을 포함하는 균주 안에서 만들어진 크실리톨 백분율(도 19c)을 보여주는 그래프이다. WT는 야생형이며; IsoHis XylB "7-7"은 크실로오스 이성화효소 및 xylB 서열을 함유하며, 36-2, 36-9 및 36-16은 Gxs1, 크실로오스 이성화효소 그리고 xylB 서열(크실룰로오스 키나제)이 함유된 형질전환체들이다.
도 20a 및 20b는 크실로오스(다이아몬드) 및 크실룰로오스(사각)와 함께, T18(도 20a) 및 대장균(도 20b)의 이성화효소 활성에서 온도 배양의 영향을 보여주는 그래프이다.
도 21a 및 21b는 크실로오스(다이아몬드) 및 크실룰로오스(사각)와 함께, T18(도 21a) 및 대장균(도 21b)의 이성화효소 분량(dose) 의존성을 나타내는 그래프이다.
도 22a 및 22b는 크실로오스 이성화효소("16"(사각형), "B"(x), 및 "6"(빗금))로 조작된 T18B 균주에서 크실로오스 사용(도 22a) 그리고 감소된 크실리톨 생산(도 22b)을 나타내는 그래프이다. 도 22c(크실로오스) 및 22d(크실리톨 생산)는 4일차(회색) 그리고 7일차(검정)에 야생형(다이아몬드)과 비교하여 발현된 동일 데이터를 나타낸다.
도 23a 및 23b는 크실로오스 이성화효소로 조작된 T18B 균주 "16"(사각형) 그리고 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제를 발현하도록 조작된 균주 "7-7"(x) 그리고 "7-3"(삼각형)에서 크실로오스 사용 및 감소된 크실리톨 생산을 보여주는 그래프이다. 도 23c(크실로오스) 및 23d(크실리톨 생산)는 9일차(회색) 그리고 11일차(검정)에서 야생형(다이아몬드)과 비교하여 발현된 동일 데이터를 나타낸다.
도 24는 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제를 발현하도록 조작된 T18B 균주 "7-7"에서 개선된 크실로오스 사용 및 감소된 크실리톨 생산을 나타내는 그래프이다. 야생형 균주는 다이아몬드 및 점선으로 나타내고, 균주 "7-7"은 원으로 나타낸다.
도 25는 α-튜블린 aspTx-neo 및 α-튜블린 gxs1-neo 구조체를 나타내는 도식이다.
도 26a는 크실로오스 전달체 Gxs1로 조작된 "7-7" T18B 균주 안에서 Gxs1 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏의 이미지이다. 도 26b는 크실로오스 전달체 AspTx로 조작된 "7-7" T18B 균주 안에서 AspTx 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏의 이미지이다.
도 27a는 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 그리고 Gxs1 전달체(삼각형) 또는 AspTx 전달체(원)로 조작된 T18 균주에서 크실로오스의 사용을 보여주는 그래프이다. 균주 "7-7"은 다이아몬드로 나타낸다. 도 27b는 3가지 변형된 균주 각각에 대하여 크실리톨 생산 대(versus) 크실로오스 사용 비율을 나타내는 막대 그래프이다. 도 27c는 균주 "7-7"과 비교하여 크실로오스 사용을 보여주는 막대 그래프이다. 도 27d는 균주 "7-7"과 비교하여 만들어진 크실리톨 생산을 보여주는 막대 그래프이다.
도 28은 유일한 탄소원으로 크실로오스가 함유된 배지에서 야생형(WT)(다이아몬드), isohis 균주 "16"(사각형), 균주 "7-7"(x), 및 전달체 균주 Gxs1(별표) 그리고 AspTx(삼각형)의 성장을 나타내는 그래프이다.
도 29a는 WT(사각형), 균주 "7-7"(삼각형), 및 전달체 균주 Gxs1(별표) 그리고 AspTx(빗금)의 성장 동안 포도당 및 크실로오스가 함유된 대체 공급원료(feedstock) 안에 남아있는 포도당을 나타내는 그래프이다. 도 29b는 WT(사각형) 균주 "7-7"(삼각형) 및 전달체 균주 Gxs1(별표) 그리고 AspTx(빗금)가 포도당 및 크실로오스가 함유된 대체 공급원료에서 성장될 때, 시간에 따른 남아있는 크실로오스와 생성된 크실리톨을 보여주는 그래프이다.
도 2는 포도당 고갈(starvation) 주기 동안 WT ONC-T18에서 크실로오스 이성화효소의 발현을 나타내는 그래프이다.
도 3은 포도당 고갈 주기 동안 WT ONC-T18에서 추정 크실룰로오스 키나제의 발현을 나타내는 그래프이다.
도 4는 알파-튜블린 ble-이성화효소 플라스미드 구조체를 도식적으로 보여준다.
도 5는 알파-튜블린 hygro-xylB 플라스미드 구조체를 도식적으로 보여준다.
도 6은 알파-튜블린 프로모터 ble 서열 2A 서열 크실로오스 이성화효소 서열 그리고 알파-튜블린 터미네이터(terminator)를 갖는 핵산 구조체를 도식적으로 보여준다.
도 7은 재조합 ONC-T18 균주 "6" 및 "16" 안에 크실로오스 이성화효소 His-태깅된 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏(Southern blot)의 이미지이다.
도 8은 재조합 ONC-T18 균주에서 다수의 크실로오스 이성화효소 His-태깅된 유전자 삽입체들의 qPCR 결정(determination)을 보여주는 그래프이다.
도 9는 그래프에서 "7-3" 및 "7-7"로 지칭된 크실로오스 이성화효소와 크실룰로오스 키나제 둘 모두를 함유하는 재조합 ONC-T18 균주안에서 xylB 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏의 이미지이다.
도 10은 재조합 7-3 및 7-7 ONC-T18 균주에서 다수의 xylB 유전자 삽입체들의 qPCR 결정을 보여주는 그래프이다.
도 11은 재조합 ONC-T18 균주 "6" 및 "16"에서 크실로오스 이성화효소 유전자 전사체의 발현을 보여주는 그래프이다.
도 12는 Wt ONC-T18 및 재조합 ONC-T18 균주 "6" 및 "16"에서 시험관내 크실로오스 이성화효소 활성을 보여주는 그래프이다.
도 13은 오직 크실로오스 이성화효소만을 인코딩하는 재조합 ONC-T18 균주 "16" 그리고 크실로오스 이성화효소와 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 재조합 ONC-T18 균주 "7-3" 및 "7-7"의 시험관내 복합된 크실로오스 이성화효소와 크실룰로오스 키나제 활성을 보여주는 그래프이다.
도 14a 및 14b는 재조합 ONC-T18 균주 "16"(사각형)에서 크실로오스 흡수 개선과 감소된 크실리톨 생산을 보여주는 그래프이다. 야생형(WT) 균주는 다이아몬드로 표시된다.
도 15a 및 15b는 재조합 ONC-T18 균주 "16"(사각형) 및 재조합 ONC-T18 균주 "7-3"(삼각형) 및 "7-7"(별표)에서 크실로오스 사용 개선 및 감소된 크실리톨 생산을 나타내는 그래프이다. 야생형(WT) 균주는 다이아몬드로 표시된다.
도 16은 재조합 ONC-T18 균주 "16" 및 재조합 ONC-T18 균주 "7-7"을 이용하여 포도당:크실로오스 발효 동안 크실리톨의 축적을 보여주는 그래프이다.
도 17은 ONC-T18의 형질전환(transformation)에 이용된 다양한 형태의 구조체를 도시한다.
도 18은 대장균(Escherichia coli)(서열번호 20)의 xylB 서열과 코돈 최적화된 형태의 대장균 xylB(서열번호 5)의 정렬을 보여주는 그래프이다.
도 19a, 19b 및 19c는 크실로오스 사용(도 19a), 포도당 사용(도 19b) 그리고 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 및 당 전달체 Gxs1을 포함하는 균주 안에서 만들어진 크실리톨 백분율(도 19c)을 보여주는 그래프이다. WT는 야생형이며; IsoHis XylB "7-7"은 크실로오스 이성화효소 및 xylB 서열을 함유하며, 36-2, 36-9 및 36-16은 Gxs1, 크실로오스 이성화효소 그리고 xylB 서열(크실룰로오스 키나제)이 함유된 형질전환체들이다.
도 20a 및 20b는 크실로오스(다이아몬드) 및 크실룰로오스(사각)와 함께, T18(도 20a) 및 대장균(도 20b)의 이성화효소 활성에서 온도 배양의 영향을 보여주는 그래프이다.
도 21a 및 21b는 크실로오스(다이아몬드) 및 크실룰로오스(사각)와 함께, T18(도 21a) 및 대장균(도 21b)의 이성화효소 분량(dose) 의존성을 나타내는 그래프이다.
도 22a 및 22b는 크실로오스 이성화효소("16"(사각형), "B"(x), 및 "6"(빗금))로 조작된 T18B 균주에서 크실로오스 사용(도 22a) 그리고 감소된 크실리톨 생산(도 22b)을 나타내는 그래프이다. 도 22c(크실로오스) 및 22d(크실리톨 생산)는 4일차(회색) 그리고 7일차(검정)에 야생형(다이아몬드)과 비교하여 발현된 동일 데이터를 나타낸다.
도 23a 및 23b는 크실로오스 이성화효소로 조작된 T18B 균주 "16"(사각형) 그리고 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제를 발현하도록 조작된 균주 "7-7"(x) 그리고 "7-3"(삼각형)에서 크실로오스 사용 및 감소된 크실리톨 생산을 보여주는 그래프이다. 도 23c(크실로오스) 및 23d(크실리톨 생산)는 9일차(회색) 그리고 11일차(검정)에서 야생형(다이아몬드)과 비교하여 발현된 동일 데이터를 나타낸다.
도 24는 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제를 발현하도록 조작된 T18B 균주 "7-7"에서 개선된 크실로오스 사용 및 감소된 크실리톨 생산을 나타내는 그래프이다. 야생형 균주는 다이아몬드 및 점선으로 나타내고, 균주 "7-7"은 원으로 나타낸다.
도 25는 α-튜블린 aspTx-neo 및 α-튜블린 gxs1-neo 구조체를 나타내는 도식이다.
도 26a는 크실로오스 전달체 Gxs1로 조작된 "7-7" T18B 균주 안에서 Gxs1 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏의 이미지이다. 도 26b는 크실로오스 전달체 AspTx로 조작된 "7-7" T18B 균주 안에서 AspTx 유전자를 탐지하기 위한 서던 블랏의 이미지이다.
도 27a는 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 그리고 Gxs1 전달체(삼각형) 또는 AspTx 전달체(원)로 조작된 T18 균주에서 크실로오스의 사용을 보여주는 그래프이다. 균주 "7-7"은 다이아몬드로 나타낸다. 도 27b는 3가지 변형된 균주 각각에 대하여 크실리톨 생산 대(versus) 크실로오스 사용 비율을 나타내는 막대 그래프이다. 도 27c는 균주 "7-7"과 비교하여 크실로오스 사용을 보여주는 막대 그래프이다. 도 27d는 균주 "7-7"과 비교하여 만들어진 크실리톨 생산을 보여주는 막대 그래프이다.
도 28은 유일한 탄소원으로 크실로오스가 함유된 배지에서 야생형(WT)(다이아몬드), isohis 균주 "16"(사각형), 균주 "7-7"(x), 및 전달체 균주 Gxs1(별표) 그리고 AspTx(삼각형)의 성장을 나타내는 그래프이다.
도 29a는 WT(사각형), 균주 "7-7"(삼각형), 및 전달체 균주 Gxs1(별표) 그리고 AspTx(빗금)의 성장 동안 포도당 및 크실로오스가 함유된 대체 공급원료(feedstock) 안에 남아있는 포도당을 나타내는 그래프이다. 도 29b는 WT(사각형) 균주 "7-7"(삼각형) 및 전달체 균주 Gxs1(별표) 그리고 AspTx(빗금)가 포도당 및 크실로오스가 함유된 대체 공급원료에서 성장될 때, 시간에 따른 남아있는 크실로오스와 생성된 크실리톨을 보여주는 그래프이다.
미생물, 이를 테면, 트라우스토키트리드는 크실로오스 대사에 요구되는 유전자를 인코딩한다. 그러나, 상기 미생물의 선천적(innate) 대사 경로는 상당량의 당 알코올, 크실리톨을 생산하고, 이것은 분비되어, 이 미생물의 성장을 잠재적으로 방해한다(도 14, WT 참고). 더욱이, 크실리톨에 격리된 탄소 원자들은 이 공정, 즉, 지질 생산의 표적 산물로부터 빠져나가는 원자들이다. 사실상, 크실로오스 환원효소/크실리톨 탈수소효소 경로와 크실로오스 이성화효소/크실룰로오스 키나제 경로의, 2개의 크실로오스 대사 경로가 존재한다(도 1). 트라우스토키트리드는 이 두 경로 모두에서 단백질을 인코딩하는 유전자를 보유하지만; 크실로오스 배지에서 성장할 때, 크실리톨의 축적(build-up)으로 증명되는 바와 같이, 전자 경로가 우세한 것으로 보인다. 다른 유기체들에서 크실리톨의 축적은 크실로오스 환원효소/크실리톨 탈수소효소 경로에 필요한 산화환원 공-인자(co-factor) 불균형으로 인하여 나타났었다. 상기 이성화효소/키나제 경로는 산화환원 공-인자들에 의존적이지 않기 때문에, 이성화효소 유전자의 과다-발현은 크실로오스가 크실룰로오스로 전환함에 있어서 공-인자 의존성을 제거한다. 본원에서 보여진 바와 같이, ONC-T18을 이용한 전사체학(transcriptomic) 연구에서 이의 크실로오스 이성화효소 및 추정 크실룰로오스 키나제 유전자는 대부분 포도당 고갈동안 발현되는 반면(도 2와 도 3); 크실로오스 환원효소 및 크실리톨 탈수소효소를 인코딩하는 것으로 추정적으로 확인된 유전자는 구성적으로 발현된다. 모든 성장 단계를 통하여 이성화효소와 키나제의 발현을 증가시키기 위하여, 미생물은 ONC-T18 이성화효소 유전자와 대장균 크실룰로오스 키나제 유전자(xylB)를 보유하도록 조작되었고, 그리하여 이들은 구성적으로 발현된 프로모터 및 터미네이터, 가령, α-튜블린 프로모터 및 터미네이터의 제어 하에 있게 된다. 임의적으로, 상기 유전자들은 유도성 프로모터 및/또는 터미네이터의 제어 하에 있을 수 있다.
제공된 재조합 미생물은 통합된 다수의 전이유전자(transgene) 복사체를 통하여 관심 대상의 유전자 발현량의 조절 수준을 실증한다. 하기 실시예에 나타낸 것과 같이, 8개의 전이유전자 복사체를 품고 있는 재조합 ONC-T18 균주(Iso-His #16)는 이 전이유전자의 단일 복사체를 품고 있는 균주(Iso-His #6)와 비교하여, 더 높은 수준의 크실로오스 이성화효소 전사체 발현, 효소 활성 그리고 크실로오스 대사를 실증한다. Iso-His #16이 xylB 유전자를 통합하도록 추가 변형될 때, 유사한 현상이 관찰된다. xylB 유전자의 다중 복사체는 단일(single) 삽입체와 비교하여, 더 큰 효소 활성 및 크실로오스 대사 생산성을 부여한다. 따라서, 예상밖으로, 크실로오스 대사 경로를 재현할 필요가 있을 뿐만 아니라, 상기 필수적인 전이유전자의 다중 복사체로 이렇게 하는 것이 필요하였다. 트라우스토키트리드(Thraustrochytrid) 게놈은 다중 전이유전자 복사체를 수용할 수 있고, 생존가능성을 유지할 수 있을 것으로 기대하지 않았었고; 따라서, 형질전환체 균주중 발현 수준에서 이러한 가변성이 관찰될 것으로 기대하지 않았다. 그러나, 본원에서 제공된 바와 같이, 특정 경로, 가령, 크실로오스 경로의 대사 조작에 최적화된 특정 발현 수준으로 "맞춤화된(tailored)" 전이유전자 복사체 수를 보유하는 형질전환체 균주를 선별함으로써, 간접적으로 전이유전자의 발현 수준 제어를 허용하는 재조합 미생물이 만들어질 수 있다.
크실로오스 대사에 관련된 하나 이상의 유전자를 인코딩하는 핵산을 본원에서 제공한다. 본원은 재조합 미생물, 상기 미생물을 만드는 방법, 그리고 크실로오스를 대사할 수 있는 이 미생물을 이용하여 오일을 생산하는 방법을 제공한다. 구체적으로, 크실로오스를 대사하고/거나 크실로오스를 유일한 탄소원으로 하여 성장할 수 있도록 미생물을 변형시키기 위한 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 및 폴리펩티드를 본원에서 제공한다. 따라서, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산이 제공된다. 상기 핵산 서열은 상기 미생물에 있어서 내인성(endogenous)이거나 이종성(heterologous)이다. 크실로오스 이성화효소의 예시적인 핵산 서열은 피로미세스 종(Piromyces sp .), 스트렙토코커스 종(Streptococcus sp .), 그리고 트라우스토키트리드를 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 예를 들면, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 예시적인 핵산 서열은 서열번호 2 및 서열번호 15를 포함하나, 이에 국한되지 않으며; 크실로오스 이성화효소의 예시적인 폴리펩티드 서열은 서열번호 16을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 크실룰로오스 키나제의 예시적인 핵산 서열은 대장균, 피로미세스 종, 사카로미세스 종(Saccharomyces sp.), 그리고 피치아 종(Pichia sp.)을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 예를 들면, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 예시적인 핵산 서열은 서열번호 5, 서열번호 17, 서열번호 18, 서열번호 19 및 서열번호 20을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 당 전달체, 가령, 크실로오스 전달체를 인코딩하는 예시적인 핵산 서열은 아스퍼길러스 종(Aspergillus sp .)의 것들, Gfx1, Gxs1 및 Sut1을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 예를 들면, 크실로오스 전달체를 인코딩하는 예시적인 핵산 서열은 서열번호 21, 서열번호 22, 서열번호 23, 및 서열번호 24를 포함하나, 이에 국한되지 않는다.
본원에서 사용된 바와 같이, "핵산"은 데옥시리보뉴클레오티드 또는 리보뉴클레오티드 그리고 이의 중합체 및 보체를 지칭한다. 이 용어는 단일 가닥- 또는 이중-가닥 형태의 데옥시리보뉴클레오티드 또는 리보뉴클레오티드를 포함한다. 이 용어는 공지된 뉴클레오티드 유사체 또는 변형된 골격 잔기 또는 연결기를 함유하는 핵산을 포함하는데, 이들은 합성, 자연 발생적, 그리고 비-자연 발생적이며, 이는 기준 핵산과 유사한 결합 특성을 가지며, 기준 핵산과 유사한 방식으로 대사된다. 이러한 유사체의 예로는 포스포로티오에이트, 포스포라미데이트, 메틸 포스포네이트, 키랄-메틸 포스포네이트, 2-O-메틸 리보뉴클레오티드, 펩티드-핵산(PNA)을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 다른 언급이 없는 한, 보존적으로 변형된 핵산 서열의 변이체(가령, 축퇴 코돈 치환체) 및 상보 서열은 본원에서 언급된 특정 핵산 서열을 대체할 수 있다. 구체적으로, 하나 이상의 선별된(또는 모든) 코돈의 제3 위치가 혼합된-염기 및/또는 데옥시이노신 잔기로 대체된, 서열의 생성에 의해 축퇴 코돈 치환체가 획득될 수 있다(Batzer et al., Nucleic Acid Res. 19:5081 (1991); Ohtsuka et al., J. Biol. Chem. 260:2605-2608 (1985); Rossolini et al., Mol. Cell. Probes 8:91-98 (1994)). 이 용어 "핵산"은 유전자, cDNA, mRNA, 올리고뉴클레오티드, 및 폴리뉴클레오티드와 호환 사용된다.
핵산은 또다른 핵산 서열과 기능적 관계에 있을 때, "작용가능하게 연계된다(operably linked)". 예를 들면, 프레서열(presequence) 또는 분비 리더를 인코딩하는 DNA는 폴리펩티드를 인코딩하는 DNA가 이 폴리펩티드의 분비에 참여하는 프레단백질로 발현된다면, 이 DNA에 작용가능하게 연계되고; 프로모터 또는 인핸서는 해당 서열의 전사에 영향을 주는 경우, 코딩 서열에 작용가능하게 연계되거나; 리보좀 결합 부위는 해독이 용이하게 되도록 위치되는 경우 코딩 서열에 작동 가능하게 연결된다. 일반적으로, "작용가능하게 연계"의 의미는 연계된 DNA 서열이 서로 가까이 있고, 분비 리더의 경우, 리딩 상(reading phase)에서 인접한다. 그러나, 인핸서는 인접할 필요는 없다. 예를 들면, 제2 핵산 서열에 작용가능하게 연결된 핵산 서열은 직접적 또는 간접적으로 상기 제2 서열에 공유적으로 연결되지만, 임의의 효과적인 3 차원 결합이 수용 가능하다. 단일 핵산 서열은 작용가능하도록 다중의 다른 서열에 연계될 수 있다. 예를 들면, 단일 프로모터는 다중 RNA 종의 전사를 지시할 수 있다. 연계(linking)는 통상적인 제한 부위에서 결찰(ligation)에 의해 이루어진다. 이러한 부위가 없다면, 합성 올리고뉴클레오티드 아답터(adaptor) 또는 링커가 통상적인 절차에 따라 이용된다.
2개 이상의 핵산 또는 폴리펩티드 서열의 내용에서 동일 또는 동일성 비율이란 하기에서 기술된 디폴트 매개변수와 함께 BLAST 또는 BLAST 2.0 서열 비교 알고리즘을 이용하여 측정하였을 때, 또는 수작업 정렬 및 시각적 점검에 의해(가령, NCBI 웹사이트 또는 이와 유사한 것들), 동일한, 또는 아미노산 잔기 또는 뉴클레오티드의 명시된 백분율을 갖는 2개 이상의 서열 또는 하위 서열을 지칭한다(가령, 비교 창 또는 지정 영역에 걸쳐 최대 대응을 위하여 비교 및 정렬되는 경우, 지정 영역에서 약 60% 동일성, 바람직하게는 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 또는 더 높은 동일성). 이러한 서열은 실질적으로 동일하다라고 한다. 이 정의는 테스트 서열의 컴플리먼트(compliment)를 또한 지칭하거나, 이에 적용될 수 있다. 이 정의는 결손 및/또는 추가를 갖는 서열, 뿐만 아니라 치환체를 갖는 서열을 또한 포함한다. 하기에서 기술된 바와 같이, 바람직한 알고리즘은 갭(gap) 및 이와 유사한 것들을 설명할 수 있다. 바람직하게는, 동일성은 길이가 적어도 약 25개 아미노산 또는 뉴클레오티드, 또는 더욱 바람직하게는 50 내지 100개 아미노산 또는 뉴클레오티드 길이의 영역에 걸쳐 존재한다.
서열 비교를 위하여, 전형적으로 하나의 서열은 테스트 서열과 비교되는 기준 서열로 삼는다. 서열 비교 알고리즘, 테스트 서열과 기준 서열을 컴퓨터에 넣고, 필요한 경우 하위서열 좌표를 지정하고, 서열 알고리즘 프로그램 매개변수들이 지정된다. 바람직하게는, 디폴트 프로그램 매개변수가 사용될 수 있거나, 대체 매개변수가 지정될 수 있다. 그 다음 서열 비교 알고리즘은 프로그램 매개변수에 근거하여 기준 서열과 비교하여 테스트 서열에 대한 서열 동일성 백분율을 산출한다.
본원에서 사용된 바와 같이, 비교 창은 20 내지 600개, 보통 약 50 내지 약 200개, 더욱 일반적으로 약 100 내지 약 150개로 구성된 집단에서 선별된 연접 위치중 임의의 하나의 세그먼트에 대한 기준을 포함하며, 이때 두 서열을 최적으로 배열시킨 후, 연접 위치에서 동일한 수의 기준 서열이 이 서열과 비교될 수 있다. 비교용 서열 정렬 방법은 당분야에 잘 공지되어 있다. 비교용 최적의 서열 정렬은 가령, Smith & Waterman, Adv. Appl. Math. 2:482 (1981)의 국소 상동성 알고리즘; Needleman & Wunsch, J. Mol. Biol. 48:443 (1970)의 상동성 정렬 알고리즘; Pearson & Lipman, Proc. Nat'l. Acad. Sci. USA 85:2444 (1988)의 유사성 방법의 조사; 이들 알고리즘의 자동화 시행(Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, WI에서 GAP, BESTFIT, FASTA, 및 TFASTA); 또는 수작업 정렬 및 시각적 감찰(가령, Current Protocols in Molecular Biology (Ausubel et al., eds. 1995 보충 참고))로 실행될 수 있다.
서열 동일성 백분율 및 서열 유사성 백분율을 결정하는데 적합한 알고리즘의 바람직한 예는 BLAST 및 BLAST 2.0 알고리즘이며, 이들은 차례로 Altschul et al., Nuc. Acids Res. 25:3389-3402 (1977), 및 Altschul et al., J. Mol. Biol. 215:403-410 (1990)에 기술되어 있다. BLAST 및 BLAST 2.0은 핵산 또는 단백질의 서열 동일성 백분율을 결정하기 위하여 본원에서 기술된 매개변수와 함께 이용된다. BLAST 분석을 실행하는 소프트웨어는 당분야에 공지된 바와 같이, National Center for Biotechnology Information을 통하여 공개적으로 이용가능하다. 이 알고리즘은 데이터베이스 서열에서 동일한 길이의 단어를 함께 정렬할 때, 일치되거나 일부 양성-값의 임계 점수 T인 문의(query) 서열에서 선별된 길이(W)의 짧은 단어를 확인함으로써, 높은 점수의 서열 쌍(HSP)을 우선 확인하는 것을 포함한다. T는 이웃 단어 점수 임계치(neighborhood word score threshold)로 지칭된다(Altschul et al., supra). 이들 초기 이웃 단어 히트(hit)는 이들이 함유된 더 긴 HSP를 찾기 위한 조사를 시작하는 근원(seed)으로 작용한다. 단어 "히트"는 누적 정렬 점수가 증가될 때까지, 각 서열을 따라 양방향으로 연장된다. 누적 점수는 뉴클레오티드 서열의 경우, 매개변수 M(매칭 잔기 쌍의 경우 보상(reward) 점수; 항상 > 0) 및 N(미스매칭 잔기의 경우 페널티 점수; 항상 < 0)을 이용하여 산출된다. 아미노산 서열의 경우, 득점 매트릭스(scoring matrix)를 이용하여 누적 점수를 산출한다. 각 방향에서 단어 히트의 연장은 다음 경우에 중단된다: 누적 정렬 점수가 이의 최대 획득값으로부터 양 X만큼 감소할 때; 하나 이상의 음성-득점 잔기 정렬의 누적으로 인하여 누적 점수가 0 또는 그 이하로 내려갈 때; 또는 서열의 한 단부에 도달할 때. BLAST 알고리즘 매개변수 W, T, 및 X는 정렬의 민감도(sensitivity) 및 속도를 결정한다. 예상 값(E)은 데이터베이스 조사에서 우연히 발생하는 것으로 예상되는 것에 대등한 또는 더 나은 점수를 갖는 상이한 정렬의 수를 나타낸다. BLASTN 프로그램(뉴클레오티드 서열의 경우)은 단어 길이(W) 11, 예상 (E) 10, M=5, N=-4 그리고 두 가닥의 비교를 디폴트로 사용한다. 아미노산 서열의 경우, BLASTP 프로그램은 단어 길이 3, 예상 (E) 10, 그리고 BLOSUM62 득점 매트릭스(Henikoff & Henikoff, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89:10915 (1989)), 정렬 (B) 50, 예상 (E) 10, M=5, N=-4, 및 두 가닥 비교를 디폴트로 사용한다.
본원에서 사용된 용어 "폴리펩티드"는 당업계에서 인지하는 일반적으로 적어도 3개의 아미노산의 중합체로써, 펩티드 및 단백질이 포함된 것으로 의도된다. 그러나, 이 용어는 특정 기능성 부류의 폴리펩티드, 예를 들면, 디새튜레이스(desaturases), 일롱게이스(elongases) 등을 지칭하는데 또한 사용된다. 이러한 부류의 경우, 본원은 이러한 폴리펩티드의 몇 가지 공지된 서열의 예를 제공한다. 그러나, 이 용어 "폴리펩티드"는 본원(또는 본원에서 언급된 자료 또는 데이터베이스)에서 언급된 완전한 서열을 갖는 폴리텝티드, 뿐만 아니라 이러한 완전한 폴리펩티드의 단편(가령, 하나 이상의 활성을 유지하는 단편)을 나타내는 폴리펩티드를 포괄하는 것으로 충분히 의도된다는 것을 당업자는 인지할 것이다. 더욱이, 단백질 서열은 일반적으로 활성의 파괴없는 일부 치환을 용인한다는 것을 당업자는 인지한다. 따라서, 활성을 보유하고, 적어도 약 30 내지 40%의 전반적인 서열 동일성, 대개 약 50%, 60%, 70%, 또는 80% 동일성을 공유하고, 추가적으로 훨씬 더 높은 동일성을 갖는 하나 이상의 영역을 보통 포함하고, 동일한 종류의 또다른 폴리펩티드와 적어도 3 또는 4개, 그리고 흔히 최대 20개 이상의 아미노산이 포괄되는 하나 이상의 매우 보존된 영역에서는 90% 또는 심지어 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99%의 동일성을 공유하는 임의의 폴리펩티드는 본원에서 사용된 용어 "폴리펩티드"에 포괄된다. 당업자는 본원에서 기술된 다양한 서열의 분석에 의해 다른 영역의 유사성 및/또는 동일성을 결정할 수 있다. 당분야에 공지된 바와 같이, 동일성 및/또는 유사성 정도를 평가하기 위하여, 아미노산 또는 뉴클레오티드 서열을 비교하는 다양한 전략이 공지되어 있고, 이를 위한 도구들도 이용가능하다. 이들 전략은 예를 들면, 수작업 정렬, 컴퓨터 지원된 서열 정렬 및 이의 조합을 포함한다. 서열 정렬을 시행하기 위한 다수의 알고리즘(일반적으로 컴퓨터로 시행됨)이 광범위하게 이용가능하거나, 당업자에 의해 만들어질 수 있다. 대표적 알고리즘은 가령, Smith and Waterman(Adv. Appl. Math., 1981, 2: 482)의 국소 상동성 알고리즘; Needleman and Wunsch(J. Mol. Biol., 1970, 48: 443)의 상동성 정렬 알고리즘; Pearson and Lipman(Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 1988, 85: 2444)의 유사성 방법의 조사; 및/또는 이들 알고리즘의 컴퓨터 실행(가령, Wisconsin Genetics Software Package Release 7.0, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, Wis.의 GAP, BESTFIT, FASTA, 및 TFASTA)을 포함한다. 이러한 알고리즘을 통합시키는 바로 이용가능한 컴퓨터 프로그램은 예를 들면, BLASTN, BLASTP, Gapped BLAST, PILEUP, CLUSTALW 등을 포함한다. BLAST 및 Gapped BLAST 프로그램을 이용할 때, 각 프로그램의 디폴트 매개변수가 사용될 수 있다. 대안으로, 실무자는 그의 실험 및/또는 다른 요구조건에 따라 비-디폴트 매개변수를 이용할 수 있다(예를 들면, 웹사이트, URL www.ncbi.nlm.nih.gov 참고).
상기에서 논의된 바와 같이, 크실로오스 전달체, 크실룰로오스 키나제 및 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산은 프로모터 및/또는 터미네이터에 연계될 수 있다. 프로모터 및 터미네이터의 예로는 튜블린 프로모터와 터미네이터를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 예를 들면, 상기 프로모터는 튜블린 프로모터, 가령, 알파-튜블린 프로모터이다. 임의적으로, 상기 프로모터는 서열번호 25 또는 서열번호 26과 80% 이상 동일하다. 임의적으로, 상기 터미네이터는 튜블린 터미네이터이다. 임의적으로, 상기 터미네이터는 서열번호 27, 서열번호 28 또는 서열번호 30과 80% 이상 동일하다.
본원에서 사용된 용어 "프로모터", "프로모터 요소", 및 "조절 서열"은 상기 프로모터에 작동가능하게 연계된 선별된 폴리뉴클레오티드 서열의 발현을 조절하고, 세포에서 선별된 폴리뉴클레오티드 서열의 발현에 영향을 주는 폴리뉴클레오티드를 지칭한다. 용어 "트라우스토키트리움(T hraustochytrium)" 프로모터는 본원에서 사용된 바와 같이, 트라우스토키트리움 세포에서 기능을 하는 프로모터를 지칭한다. 일부 구체예들에서, 프로모터 요소는 코딩 서열의 5' 위치 해독되지 않는 영역(UTR)이거나 이를 포함한다. 5' UTR은 mRNA 전사체의 일부를 형성하고, 따라서 진핵생물 유기체에서 단백질의 발현의 필수 부분이다. 전사후 5'UTR은 전사 및 해독 수준 모두에서 단백질 발현을 조절할 수 있다.
본원에서 사용된 용어 "터미네이터"는 선별된 서열의 발현을 폐기하고, 성숙화를 위하여 표적을 붙이고(가령, polyA 꼬리 추가), 또는 세포에서 상기 터미네이터에 작동가능하게 연계된 선별된 폴리뉴클레오티드 서열에 mRNA 안정성을 부여하는 폴리뉴클레오티드를 말한다. 터미네이터 서열은 유전자에서 중단(stop) 코돈의 하류에 있을 수 있다. 용어 "트라우스토키트리움 터미네이터"는 본원에서 사용된 바와 같이, 트라우스토키트리움 세포에서 기능을 하는 프로모터를 지칭한다. 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 그리고 크실로오스 전달체 뿐만 아니라 프로모터, 터미네이터, 선택가능한 표지들, 2A 펩티드 또는 이의 임의의 조합을 인코딩하는 핵산 서열을 함유하는 핵산 구조체를 본원에서 제공한다. 예를 들면, 프로모터, 선택가능한 표지, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 그리고 터미네이터가 함유된 제1 핵산 구조체를 제공한다. 프로모터, 선택가능한 표지, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열, 및 터미네이터가 함유된 제2 핵산 구조체를 또한 제공한다. 프로모터, 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 선택가능한 표지, 및 터미네이터가 함유된 제3 핵산 구조체를 더 제공한다. 이들 구조체는 예시적인 것이며, 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열은 동일한 또는 상이한 프로모터의 제어 하에서 동일한 구조체 상에 포함될 수 있다. 임의적으로, 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열 각각은 동일한 구조체 상에 있고, 가령, 서열번호 6에 나타낸 2A 폴리펩티드 서열에 의해 분리된다. 따라서, 예를 들면, 핵산 구조체는 튜블린 프로모터, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 크실룰로오스 키나제, 그리고 서열번호 6을 인코딩하는 핵산 서열에 의해 분리된 크실로오스 전달체, 튜블린 터미네이터 ?? 선택가능한 표지를 포함할 수 있다. 임의적으로, 상기 선택가능한 표지는 ble 유전자다. 임의적으로, 상기 선택가능한 표지는 서열번호 29를 포함한다.
구절 "선택가능한 표지"는 본원에서 사용된 바와 같이, 뉴클레오티드 서열, 가령, 분리를 허용하는 산물(폴리펩티드)을 인코딩하는 유전자, 또는 유전자 산물(가령, 폴리펩티드) 자체를 말한다. 용어 "선택가능한 표지"는 본원에서 사용된 바와 같이, 당업계에서 일반적으로 세포 또는 유기체 안에 존재할 때, 이 표지는 특정 규정된 배양 조건(선택적 조건) 하에 이 세포 또는 유기체에게 유의적인 성장 또는 생장에 유리한 또는 불리한 성질을 부여하는 것으로 이해되며, 이를 지칭한다. 예를 들면, 상기 조건은 특정 화합물 또는 특정 환경적 조건의 존재 또는 부재, 이를 테면, 증가된 온도, 증가된 방사선, 이 표지의 부재에서 독성인 화합물의 존재 등이 될 수 있다. 이러한 화합물(들) 또는 환경 조건(들)의 존재 또는 부재는 선택적 조건 또는 선택적 조건들로 지칭된다. 성장에 유익한 것이란 강화된 생존력(가령, 상기 성장 이익을 갖는 세포 또는 유기체는 다른 동일한 세포와 비교하여 평균적으로 수명이 연장됨), 다른 동일한 세포 또는 유기체와 비교하여 증식률의 증가(또한 본원에서 성장률로 지칭됨) 또는 이둘 모두를 의미한다. 일반적으로, 상기 성장 이익이 결여된 동일한 세포 집단과 비교하여 성장 이익을 갖는 세포 집단은 죽은 또는 비생존 세포가 더 적고/거나 세포 증식 비율이 더 클 것이다. 전형적으로 선택가능한 표지는 세포에 성장 이익을 부여하지만, 특정 선택가능한 표지들은 세포에 성장 불이익을 부여하고, 가령, 이들은 이 표지를 발현하지 못하는 동일한 세포보다 특정 화합물 또는 환경 조건의 유해한 영향에 세포가 더 민감하도록 한다. 항생제 내성 표지들은 이 표지를 발현하는 세포를 선별하는데 사용될 수 있는 비-제한적 선택가능한 표지 부류다. 적절한 농도의 항생제(선택적 조건) 존재 하에서, 이러한 표지는 이 표지를 발현하는 세포에 성장 이익을 부여한다. 따라서, 항생제 내성 표지를 발현하는 세포는 이 항생제 존재하에 생존 및/또는 증식할 수 있는 반면, 이 항생제 내성 표지를 발현하지 못하는 세포는 이 항생제 존재 하에 생존하지 못하고/거나 증식할 수 없다.
선택가능한 표지들의 예로는 통상적인 세균성 항생제, 이를 테면, 암피실린, 카나마이신 및 클로람페니콜, 뿐만 아니라 미세조류(microalgae)에서 기능을 하는 것으로 공지된 선택적 화합물을 포함하나, 이에 국한되지 않으며; 예로는 rrnS 및 AadA(아미노글리코시드 3'-아데닐트란퍼라제)를 포함하며, 이들은 대장균 플라스미드 R538-1로부터 단리될 수 있고, 차례로 대장균 및 일부 미세조류에서 차례로 스펙티노마이신 및 스트렙토마이신에 대한 내성을 부여한다(Hollingshead and Vapnek, Plasmid 13:17-30, 1985; and Vallon, Eukaryot Cell. 10(12):1670-8 2011). 또다른 예는 23S RNA 단백질, rrnL로써, 이는 에리트로마이신에 대하여 내성을 부여한다(Newman, Boynton et al., Genetics, 126:875-888 1990; Roffey, Golbeck et al., Proc. Natl Acad. Sci. USA, 88:9122-9126 1991). 또다른 예는 스트렙토알로테이츄스 힌두스타누스(streptoalloteichus hindustanus)로부터 단리된 Ble, GC 풍부 유전자로써, 제오신에 대하여 내성을 부여한다 (Stevens, Purton et al., Mol. Gen. Genet., 251:23-30 1996). 또다른 예가 Aph7이며, 이는 스트렙토마이세스 히그로스코피쿠스(streptomyces hygroscopicus)-유도된 아미노글리코시드 포스포트란스퍼라제이며, 히그로마이신 B에 내성을 부여한다(Berthold, Schmitt et al., Protist 153(4):401-412 2002). 추가 예는 다음을 포함한다: AphVIII, 이것은 스트렙토미세스 리모수스(streptomyces rimosus)-유도된 아미노글리코시드 3'-포스포트란스퍼라제 유형 VIII이며, 이는 대장균 및 일부 미세조류에서 파로마이신에 대하여 내성을 부여하고(Sizova, Lapina et al., Gene 181(1-2):13-18 1996; Sizova, Fuhrmann et al., Gene 277(1-2):221-229 2001); Nat 및 Sat-1, 이들은 스트렙토미세스 노우르세이(streptomyces noursei)로부터 노우스세오트리친 아세틸 전이효소를 인코딩하고, 대장균으로부터 스트렙토트리친 아세틸 전이효소를 인코딩하며, 노우스세오트리친에 대한 내성을 부여하며(Zaslavskaia, Lippmeier et al., Journal of Phycology 36(2):379-386, 2000); Neo, 이것은 아미노글리코시드 3'-포스포트란스퍼라제로써, 아미노글리코시드에 대한 내성을 부여하며; 카나마이신, 네오마이신, 그리고 유사체 G418(Hasnain, Manavathu et al., Molecular and Cellular Biology 5(12):3647-3650, 1985); 그리고 Cry1, 이것은 리보좀 단백질 S14로써, 에메틴에 대한 내성을 부여한다(Nelson, Savereide et al., Molecular and Cellular Biology 14(6):4011-4019, 1994).
다른 선택가능한 표지들은 자가(auto)- 또는 영양요구성(auxo-trophic) 표지들로 지칭되는 영양 표지들을 포함한다. 이들은 광합성 유기체 안에서 광합성 활성의 복원에 근거하여 선별하게 되는 광독립영양성(photoautotrophy) 표지들을 포함한다. 광독립영양요구성 표지들은, AtpB, TscA, PetB, NifH, psaA 및 psaB(Boynton, Gillham et al., Science 240(4858):1534-1538 1988; Goldschmidt-Clermont, Nucleic Acid Research 19(15):4083-4089, 1991; Kindle, Richards et al., PNAS, 88(5):1721-1725, 1991; Redding, MacMillan et al., EMBO J 17(1):50-60, 1998; Cheng, Day et al., Biochemical and Biophysical Research Communications 329(3):966-975, 2005)를 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 대안의, 또는 추가적인 영양 표지들은 ARG7(이것은 아르기닌 생합성의 결정적 단계인 아르기노숙시네이트 분해효소를 인코딩함)(Debuchy, Purton et al., EMBO J 8(10):2803-2809, 1989); NIT1(이것은 질소 대사에 필수적인 질산염 환원효소를 인코딩함)(, Schnell et al., PNAS, 86(17):6449-6453, 1989); THI10(이것은 티아민 생합성에 필수적임)(Ferris, Genetics 141(2):543-549, 1995); 그리고 NIC1(이것은 니코틴아미드 생합성의 필수 단계를 촉매함)(Ferris, Genetics 141(2):543-549, 1995)을 포함한다. 이러한 표지들은 세포 성장 또는 생존에 필요한 화합물을 만들기 위한 생합성 경로에서 기능을 하는 일반적으로 효소들이다. 일반적으로, 비-선택적 조건하에서, 요구되는 화합물은 환경에 존재하거나, 세포 안에서 대체 경로에 의해 만들어진다. 선택적 조건하에서, 이 표지가 관련된 생합성 경로의 기능은 이 화합물을 만드는데 필요하다.
본원에서 사용된 바와 같이, 구절 "선택 물질"은 선택가능한 표지를 품고 있는 세포 또는 세포 집단에 우호적인 또는 적대적 방식으로 이 세포 또는 세포 집단에 선택적 압력을 도입하는 물질을 지칭한다. 예를 들면, 상기 선택 물질은 항생제이며, 상기 선택가능한 표지는 항생제 내성 유전자다. 임의적으로, 제오신은 선택 물질로 사용된다.
크실로오스 대사에 관련된 유전자를 인코딩하는 제공된 핵산과, 이를 포함하는 핵산 구조체로 형질전환될 수 있는 적합한 미생물은 조류(가령, 미세조류), 곰팡이(효모 포함), 박테리아, 또는 원생생물을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 임의적으로, 상기 미생물은 목(order) 트라우스키트리알레스(Thraustochytriales)의 트라우스토키트리드, 더욱 구체적으로 속(genus) 트라우스토키트리움의 트라우스키트리알레스(Thraustochytriales)를 포함한다. 임의적으로, 미생물의 집단은 U.S. 특허 번호 5,340,594 및 5,340,742에서 기술된 트라우스키트리알레스를 포함하며, 이들 특허는 전문이 본원의 참고자료에 편입된다. 상기 미생물은 트라우스토키트리움 종, 이를 테면, U.S. 특허 번호 8,163,515에 기술되고, ATCC 기탁 번호 PTA-6245(가령, ONC-T18)로 기탁된 트라우스토키트리움 종일 수 있고, 이 특허는 전문이 본원의 참고자료에 편입된다. 따라서, 상기 미생물은 서열번호 1에 대하여 적어도 95%, 96%, 97%, 98%, 99%, 99.1%, 99.2%, 99.3%, 99.4%, 99.5%, 99.6%, 99.7%, 99.8%, 99.9% 또는 그 이상(가령, 100% 포함) 동일한 18s rRNA 서열을 보유할 수 있다.
미세조류는 당분야에서 다양한 생물 군을 대표하는 것으로 인지된다. 본 서류의 목적을 위하여, 용어 "미세조류"는 수생 및/또는 고체 환경(일부 시아노박테리아는 고체/모래 거주)으로부터 유도된 단세포 미생물을 설명하는 것으로 사용될 것이다. 수생 환경은 해양 환경에서부터 민물 호수 및 강으로 확장되며, 하구와 강어귀와 같은 담함수(brackish) 환경을 포함한다. 미세조류는 광합성일 수 있고; 임의적으로, 미세조류는 이종영양성이다. 미세조류는 진핵생물 성질이거나 원핵생물 성질일 수 있다. 미세조류는 비-운동성(motile)이거나, 운동성일 수 있다.
본원에서 사용된 용어 트라우스토키트리드는 목 트라우스키트리알레스의 임의의 구성원을 지칭하며, 여기에는 과(family) 트라우스토키트라아세아(Thraustochytriaceae)를 포함한다. 트라우스토키트리드로 기술된 균주는 다음의 유기체를 포함한다: 목: 트라우스키트리알레스; 과: 트라우스토키트라아세아(Thraustochytriaceae); 속(Genera): 트라우스토키트리움(종: sp., 아루디멘타레(arudimentale), 아루레움(aureum), 벤티코라(benthicola), 글로보숨(globosum), 키네이(kinnei), 모티붐(motivum), 멀티루디멘타레(multirudimentale), 파키데러뭄(pachydermum), 프로리페룸(proliferum), 로세움(roseum), 스트리아툼(striatum)), 울캐니아(Ulkenia)(종: sp., 아모에보이데아(amoeboidea), 케르구엘렌시스(kerguelensis), 미누타(minuta), 프로푼다(profunda), 라디아타(radiata), 사일렌스(sailens), 사르카리아나(sarkariana), 쉬조키트롭스(schizochytrops), 비수르겐시스(visurgensis), 요르켄시스(yorkensis)), 쉬조키트리움(종: sp., 아그레가툼(aggregatum), 림나세움(limnaceum), 만그로베이(mangrovei), 미누툼(minutum), 옥토스포루니(octosporuni)), 하포키트리움(Japonochytrium)(종: sp., 마리눔(marinum), 아팔로키트리움(Aplanochytrium)(종: sp., 할리오티디스(haliotidis), 케르구엘렌시스(kerguelensis), 프로푼다(profunda), 스토키노이(stocchinoi), 알토르니아(Althornia)(종: sp., 크루치(crouchii)), 또는 엘리나(Elina)(종: sp., 마리살바(marisalba), 시노르리피카(sinorifica)). 울케니아(Ulkenia) 안에 기술된 종은 속 트라우스토키트리움의 구성원으로 간주될 것이다. 속 트라우스토키트리움안에 있는 것으로 기술된 균주는 속 쉬조키트리움과 공통의 속성(trait)을 공유하고, 이에 속하는 것으로 기술될 수 있다. 예를 들면, 일부 분류학상 분류에서 ONC-T18은 속 트라우스토키트리움안에 있는 것으로 간주될 수 있고, 한편 다른 분류에서는 속 쉬조키트리움에 속하는 것으로 설명될 수 있는데, 그 이유는 이들 두 속을 모두 나타내는 속성을 포함하기 때문이다.
본원에서 사용된 용어 "형질전환"은 외인성 또는 이종성 핵산 분자(가령, 벡터 또는 재조합 핵산 분자)가 수령 세포 또는 미생물 안으로 도입되는 공정을 지칭한다. 상기 외인성 또는 이종성 핵산 분자는 숙주 세포 또는 미생물의 게놈을 구축하는 염색체 DNA 안에 통합되거나(가령, 공유적으로 연계되거나), 통합되지 않을 수 있다. 예를 들면, 상기 외인성 또는 이종성 폴리뉴클레오티드는 에피좀 요소, 이를 테면 플라스미드 상에 유지될 수 있다. 대안으로 또는 추가적으로, 상기 외인성 또는 이종성 폴리뉴클레오티드는 염색체 안으로 통합되어, 염색체 복제를 통하여 딸 세포로 유전될 수 있다. 형질전환 방법은 인산칼슘염 침전; Ca2 + 처리; 수령 세포에 재조합 핵산이 포함된 박테리아 원형질을 융합; 재조합 핵산이 포함된 리포좀으로 수령 세포를 처리; DEAE 덱스트란; 폴리에틸렌 글리콜(PEG)을 이용한 융합; 전기천공; 자석천공(magnetoporation); 바이오블라스틱 운반(biolistic delivery); 레트로바리어스 감염; 리포펙션; 그리고 세포 안으로 DNA의 직접 현미주사를 포함하나, 이에 국한되지 않는다.
세포에 관하여 사용될 때, 용어 "형질전환된"이란 세포가 외인성 또는 이종성 유전적 물질(가령, 재조합 핵산)을 휴대하도록, 본원에서 기술된 형질전환을 겪는 세포를 지칭한다. 용어 "형질전환된"이란 외인성 또는 이종성 유전 물질을 보유하는 미생물, 미생물 균주, 조직, 유기체 등을 또한 지칭하거나, 대안으로 지칭하는데 이용될 수 있다.
이 용어는 핵산을 세포 또는 유기체 안으로 도입할 때 이용되는 경우, 예를 들면, 형질전환 방법(가령, 칼슘-염화물-매개된 형질전환, 전기천공, 입자 투하(particle bombardment))에 의한 도입, 그리고 형질도입, 콘쥬게이션 및 메이팅(mating)을 비롯한 다른 방법에 의한 도입을 포괄하는 광의의 의미로 의도된다. 임의적으로, 구조체를 이용하여 핵산을 세포 또는 유기체 안으로 도입한다.
본원에서 기술된 방법에 사용되는 미생물은 다양한 지질 화합물을 만들 수 있다. 본원에서 사용된 용어 "지질"은 인지질, 자유 지방산, 지방산 에스테르, 트리아실글리세롤, 스테롤 및 스테롤 에스테르, 카로테노이드, 산토필(가령, 옥시카로테노이드), 탄화수소, 및 당업자에게 공지된 다른 지질을 포함한다. 임의적으로, 상기 지질 화합물은 불포화된 지질을 함유한다. 상기 불포화된 지질은 다중불포화된 지질(가령, 2개 이상의 불포화된 탄소-탄소 결합, 가령, 이중 결합을 함유하는 지질) 또는 고도의 불포화된 지질(가령, 4개 이상의 불포화된 탄소-탄소 결합을 함유하는 지질)을 포함할 수 있다. 불포화된 지질의 예로는 오메가-3 및/또는 오메가-6 다중불포화 지방산, 이를 테면, 도코사헥사엔산(가령, DHA), 에이코사펜타엔산(가령, EPA), 및 기타 자연 발생적 불포화된, 다중불포화된 그리고 매우 불포화된 화합물들을 포함한다.
C5 탄소 당, 이를 테면 크실로오스를 대사하기 위하여 폴리펩티드를 발현하도록 조작된 재조합 미생물을 본원에서 제시한다. 구체적으로, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 1개 이상의 복사체를 갖는 재조합 미생물을 제공하며, 여기에서 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산은 외인성 핵산이다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체를 포함한다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 내인성 핵산 서열의 하나 또는 2개의 복사체를 또한 포함한다. 예를 들면, 상기 재조합 미생물은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 내인성 핵산 서열의 하나 또는 2개의 복사체, 및 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열의 하나의 복사체를 포함할 수 있다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 3개의 복사체를 포함하는데, 하나는 외인성으로 도입되며, 다른 2개는 내인성이다. 용어 "재조합"이 세포, 핵산, 폴리펩티드, 벡터, 또는 이와 유사한 것에 관련하여 이용될 때, 세포, 핵산, 폴리펩티드, 벡터 또는 이와 유사한 것들은 실험실 방법에 의해 변형되었거나, 실험실 방법의 결과이며, 비-자연 발생적이다. 따라서, 예를 들면, 재조합 미생물은 실험실 방법, 가령, 핵산을 미생물 안으로 도입시키는 형질전환 방법에 의해 만들어지거나, 변형된 미생물을 포함한다. 재조합 미생물은 이 미생물의 고유한 형태(비-재조합) 안에서 볼 수 없는 핵산 서열을 함유할 수 있거나, 변형된, 가령, 비-고유한 프로모터에 연계된 변형 핵산 서열을 함유할 수 있다.
본원에서 사용된 용어 "외인성"이란 물질, 이를 테면 핵산(가령, 핵산은 조절 서열 및/또는 유전자 포함) 또는 폴리펩티드가 이들이 존재하는 세포 또는 유기체 안으로 인위적으로 도입되고/되거나, 이들이 존재하는 세포 안에서 자연 발생되는 것이 아닌 물질들을 지칭한다. 환언하면, 상기 물질, 이를 테면 핵산 또는 폴리펩티드는 이것들이 도입되는 세포 또는 유기체의 외부로부터 기인된다. 외인성 핵산은 세포 안에 자연적으로 존재하는 핵산의 서열과 동일한 뉴클레오티드 서열을 보유할 수 있다. 예를 들면, 트라우스토키트리드 세포는 트라우스토키트리드 또는 트라우스토키트리움 조절 서열을 갖는 핵산을 함유하도록 조작될 수 있다. 특정 실시예에서, 내인성 트라우스토키트리드 또는 트라우스토키트리움 조절 서열은 자연 조건에서 관여하지 않는 조절 서열을 갖는 유전자에 작동가능하게 연계된다. 트라우스토키트리드 또는 트라우스토키트리움 조절 서열이 숙주 세포에서 자연발생할 수 있지만, 도입된 핵산은 본원에 따라 외인성이다. 외인성 핵산은 세포 안에 자연적으로 존재하는 임의의 핵산의 서열과는 상이한 뉴클레오티드 서열을 보유할 수 있다. 예를 들면, 상기 외인성 핵산은 이종성 핵산, 가령, 상이한 종 또는 유기체로부터의 핵산일 수 있다. 따라서, 외인성 핵산은 원천 유기체에서 자연적으로 발견되는 핵산의 서열과는 동일하지만, 상기 외인성 핵산이 도입된 세포의 것과는 상이한 핵산 서열을 보유할 수 있다. 본원에서 사용된 용어 "내인성"이란 세포에 고유한 핵산 서열을 지칭한다. 본원에서 사용된 용어 "이종성"이란 세포에 고유하지 않은 핵산 서열, 상기 세포가 아닌 다른 유기체로부터 유래된 핵산 서열을 지칭한다. 용어 "외인성" 및 "내인성" 또는 "이종성"은 상호 배타적이지 않다. 따라서, 핵산 서열은 외인성이고, 내인성일 수 있는데, 이 의미는 상기 핵산 서열이 도입되는 세포가 이 세포에 자연적으로 존재하는 핵산 서열과 동일한 또는 유사한 서열을 도입되는 핵산 서열이 보유할 수 있다는 것을 의미한다. 유사하게, 핵산 서열은 외인성이고, 이종성일 수 있는데, 이 의미는 상기 핵산 서열이 도입되는 세포가 이 세포에 고유하지 않는 서열, 가령, 상이한 유기체로부터 기인된 서열을 도입되는 핵산 서열이 보유할 수 있다는 것을 의미한다.
상기에서 논의된 바와 같이, 제공된 재조합 미생물은 2개 이상의 복사체의 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열을 함유한다. 제공된 미생물은 임의적으로 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 서열을 또한 함유한다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 크실로오스 전달체를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 서열을 포함한다. 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제, 및/또는 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열은 임의적으로 외인성 핵산 서열이다. 임의적으로, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열은 내인성 핵산 서열이다. 임의적으로, 크실룰로오스 키나제 및/또는 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열은 이종성 핵산이다. 임의적으로, 상기 미생물은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체, 그리고 크실로오스 전달체를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 서열을 함유한다. 임의적으로, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 이종성 핵산 서열은 서열번호 2에 대하여 90% 이상 동일하다. 임의적으로, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 이종성 핵산 서열은 서열번호 5에 대하여 90% 이상 동일하다. 위에서 언급된 바와 같이, 임의적으로, 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산은 이종성 핵산이다. 임의적으로, 이종성 핵산에 의해 인코딩된 크실로오스 전달체는 칸디다 인테르메디아(C andida intermedia)의 GXS1이다. 임의적으로, 크실로오스 전달체를 인코딩하는 이종성 핵산 서열은 서열번호 23에 대하여 90% 이상 동일하다.
제공된 재조합 미생물은 크실로오스 대사에 관련된 유전자를 인코딩하는 핵산 서열을 함유할 뿐만 아니라, 이들은 이러한 서열의 다중 복사체를 함유할 수 있다. 따라서, 상기 미생물은 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함한다. 임의적으로, 상기 미생물은 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함한다. 임의적으로, 상기 미생물은 상기 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함한다.
제공된 미생물에서, 상기 핵산, 가령, 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 또는 크실로오스 전달체는 프로모터 및/또는 터미네이터에 작동가능하게 연계될 수 있다. 임의적으로, 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열은 프로모터에 작동가능하게 연계된다. 임의적으로, 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열 및/또는 상기 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열은 또한 프로모터에 작동가능하게 연계된다. 임의적으로, 상기 프로모터는 튜블린 프로모터이다. 임의적으로, 상기 프로모터는 서열번호 25 또는 서열번호 26과 80% 이상 동일하다. 임의적으로, 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열은 터미네이터를 포함한다. 임의적으로, 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열은 터미네이터를 포함한다. 임의적으로, 상기 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열은 터미네이터를 포함한다. 임의적으로, 상기 터미네이터는 튜블린 터미네이터이다. 임의적으로, 상기 터미네이터는 서열번호 27, 서열번호 28 또는 서열번호 30과 80% 이상 동일하다.
제공된 미생물은 관심 대상 유전자의 형질전환을 확인하기 위한 선택가능한 표지를 함유할 수 있다. 따라서, 상기 미생물은 선택가능한 표지를 더 함유할 수 있다. 임의적으로, 상기 선택가능한 표지는 항생제 내성 유전자다. 임의적으로, 상기 항생제는 제오신, 히그로마이신 B, 카나마이신 또는 네오마이신이다. 임의적으로, 상기 미생물은 트라우스토키트리움 또는 쉬조키트리움 미생물이다. 임의적으로, 상기 미생물은 ONC-T18이다.
제공된 미생물은 야생형 미생물과 비교하여 구별가능한 특징들을 보유한다. 예를 들면, 상기 재조합 미생물은 비-재조합 대조(또는 야생형) 미생물과 비교하여 크실로오스 운반 활성이 증가되거나, 비-재조합 대조(또는 야생형) 미생물과 비교하여 크실로오스 이성화효소 활성이 증가되거나, 비-재조합 대조(또는 야생형) 미생물과 비교하여 크실룰로오스 키나제 활성이 증가되거나, 이들 활성의 임의의 조합이 증가될 수 있다. 임의적으로, 상기 재조합 미생물은 유일한 탄소원인 크실로오스를 이용하여 성장한다.
상기 재조합 미생물을 만드는 방법을 또한 제공한다. 따라서, 재조합 크실로오스-대사 미생물을 만드는 방법이 제공되는데, 이 방법은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 하나 이상의 핵산 구조체를 제공하는 단계; 상기 미생물을 상기 하나 이상의 핵산 구조체로 형질전환시키는 단계; 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체를 포함하는 미생물을 단리시키는 단계를 포함한다. 임의적으로, 상기 방법은 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체를 포함하는 미생물을 단리하는 단계를 추가로 포함한다. 임의적으로, 상기 방법은 크실로오스 전달체의 하나 이상의 복사체를 포함하는 미생물을 단리하는 것을 포함한다. 임의적으로, 상기 하나 이상의 핵산 구조체는 선택가능한 표지를 추가로 포함한다.
제공된 방법들에서, 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 크실룰로오스 키나제 및 크실로오스 전달체는 동일한 또는 상이한 구조체 상에 위치해 있을 수 있다. 임의적으로, 상기 방법은 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 제1 핵산 구조체, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 제2 핵산 구조체 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 제3 핵산 구조체를 제공하는 것을 포함한다. 임의적으로, 제1, 제2 및 제3 핵산 구조체들은 동일한 선택가능한 표지를 포함한다. 임의적으로, 제1 핵산 구조체는 프로모터, 선택가능한 표지, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 및 터미네이터를 포함한다. 임의적으로, 제2 핵산 구조체는 프로모터, 선택가능한 표지, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열, 및 터미네이터를 포함한다. 임의적으로, 제3 핵산 구조체는 프로모터, 상기 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 선택가능한 표지, 및 터미네이터를 포함한다. 위에서 언급된 바와 같이, 선택가능한 표지들은 항생제 내성 유전자를 포함하나, 이에 한정되지 않는 것을 함유한다. 임의적으로, 상기 항생제는 제오신, 히그로마이신 B, 카나마이신 또는 네오마이신이다. 구조체에 이용되는 프로모터는 튜블린 프로모터를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 임의적으로, 상기 프로모터는 서열번호 25 또는 서열번호 26과 80% 이상 동일하다. 구조체에 사용되는 터미네이터는 튜블린 터미네이터를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 임의적으로, 상기 터미네이터는 서열번호 27, 서열번호 28, 또는 서열번호 30과 80% 이상 동일하다.
제공된 방법들에서, 단리된 재조합 미생물은 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제 및 크실로오스 전달체의 하나 이상의 복사체를 함유할 수 있다. 임의적으로, 단리된 재조합 미생물은 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함한다. 임의적으로, 크실로오스 이성화효소는 내인성 크실로오스 이성화효소 또는 이종성 크실로오스 이성화효소다. 임의적으로, 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열은 서열번호 2와 90% 이상 동일하다. 임의적으로, 단리된 재조합 미생물은 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 또는 40개 이상의 복사체를 포함한다. 임의적으로, 크실룰로오스 키나제는 이종성 크실룰로오스 키나제이다. 임의적으로, 상기 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열은 서열번호 5와 90% 이상 동일하다. 임의적으로, 단리된 재조합 미생물은 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함한다. 임의적으로, 크실로오스 전달체는 이종성 크실로오스 전달체이다. 임의적으로, 크실로오스 전달체는 칸디다 인테르메디아의 GXS1이다. 임의적으로, 상기 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열은 서열번호 23과 90% 이상 동일하다. 임의적으로, 상기 미생물은 트라우스토키트리움 또는 쉬조키트리움 미생물이다. 임의적으로, 상기 미생물은 ONC-T18이다.
위에서 언급된 바와 같이, 단리된 재조합 미생물은 대조 비-재조합 미생물과 비교하여 증가된 크실로오스 운반 활성을 가지고, 대조 비-재조합 미생물과 비교하여 증가된 크실로오스 이성화효소 활성을 가지며, 대조 비-재조합 미생물과 비교하여 증가된 크실룰로오스 키나제 활성을 가지고, 또는 이들의 조합을 가진다. 임의적으로, 단리된 재조합 미생물은 유일한 탄소원인 크실로오스를 이용하여 성장한다.
본원에서 기술된 바와 같이, "대조" 또는 "표준 대조"란 테스트 시료, 측정, 또는 값에 비교하기 위하여 기준, 통상 공지의 기준으로 삼는 시료, 측정 또는 값을 지칭한다. 예를 들면, 테스트 미생물, 가령, 크실로오스를 대사하기 위한 유전자를 인코딩하는 핵산 서열로 형질전환된 미생물은 공지의 정상적(야생형) 미생물(가령, 표준 대조 미생물)과 비교될 수 있다. 표준 대조는 유일한 탄소원인 크실로오스에서 성장하지 못하거나, 성장이 빈약한 미생물 집단, 또는 크실로오스 이성화효소 활성, 크실룰로오스 키나제 활성 및/또는 크실로오스 운반 활성을 갖지 못하거나 최소 수준으로 갖는 미생물 집단(가령, 표준 대조 미생물)으로부터 수집된 평균 측정 또는 값을 또한 나타낸다. 당업자는 임의의 수의 매개변수(가령, RNA 수준, 폴리펩티드 수준, 특이적 세포 유형, 및 이와 유사한 것들)의 평가를 위하여 표준 대조를 기획할 수 있다는 것을 인지할 것이다.
상기 재조합 미생물을 이용하여 오일을 생산하는 방법을 또한 본원에서 제공한다. 상기 방법은 상기 재조합 미생물을 제공하는 것을 포함하며, 여기에서 상기 미생물은 유일한 탄소원인 크실로오스에서 성장하고, 오일을 생산하는 적절한 조건하에서 배양 배지에서 상기 미생물을 배양한다. 임의적으로, 상기 오일은 트리글리세리드를 포함한다. 임의적으로, 상기 오일은 알파 리놀렌산, 아라키돈산, 도코사헥사엔산, 도코사펜타엔산, 에이코사펜타엔산, 감마-리놀렌산, 리놀레산, 리놀렌산 또는 이들의 조합을 포함한다. 임의적으로, 상기 방법은 상기 오일을 단리하는 것을 추가로 포함한다.
제공된 방법은 당분야에 공지된 방법에 따라 미생물을 배양하는 단계를 포함하거나, 이 단계를 병용할 수 있다. 예를 들면, 트라우스토키트리드, 가령, 트라우스토키트리움 종은 U.S. 미국 특허 공개 2009/0117194 또는 2012/0244584에서 설명된 방법에 따라 배양될 수 있으며, 이들 문헌은 본원에서 이용된 상기 방법의 각 단계 또는 본원에서 이용된 조성물을 위하여 이들의 전문이 참고자료에 편입된다.
미생물은 성장 배지(배양 배지로 또한 공지된)에서 성장한다. 임의의 다양한 배지는 본원에서 기술된 미생물 배양용으로 적합하게 이용될 수 있다. 임의적으로, 상기 배지는 상기 미생물을 위한 탄소원 및 질소원이 포함된 다양한 영양 성분들을 공급한다. 트라우스토키트리드 배양용 배지는 임의의 다양한 탄소원을 함유할 수 있다. 탄소원의 예로는 지방산, 지질, 글리세롤, 트리글리세롤, 탄수화물, 폴리올, 아미노 당, 및 임의 종류의 바이오매스 또는 폐기물류(waste stream)를 포함한다. 지방산은 예를 들면, 올레산을 포함한다. 탄수화물은 포도당, 셀롤로오스, 헤미셀롤로오스, 과당, 덱스트로스, 크실로오스, 락툴로오스, 갈락토스, 말토트리오스, 말토스, 락토스, 글리코겐, 젤라틴, 전분(옥수수 또는 밀), 아세테이트, m-이노시톨(가령, 옥수수 침지액으로부터 유도됨), 갈락투론산(가령, 펙틴으로부터 유도됨), L-퓨코스(가령, 갈락토스로부터 유도됨), 젠티오비오스, 글루코사민, 알파-D-포도당-1-포스페이트(가령, 포도당으로부터 유도됨), 셀로비오스, 덱스트린, 알파-시클로덱스트린(가령, 전분으로부터 유도됨), 및 슈크로스(가령, 당밀로부터)를 포함하나 이에 국한되지 않는다. 폴리올은 말리톨, 에리트리톨 및 아도니톨을 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 아미노 당은 N-아세틸-D-갈락토사민, N-아세틸-D-글루코사민, 및 N-아세틸-베타-D-만노사민을 포함하나 이에 국한되지 않는다.
임의적으로, 본원에서 제공된 미생물은 바이오매스 및/또는 관심 대상 화합물(가령, 오일 또는 총 지방산(TFA) 함량)의 생산을 증가시키는 조건하에서 배양된다. 예를 들면, 트라우스토키트리드는 전형적으로 염수 배지에서 배양된다. 임의적으로, 트라우스토키트리드는 약 0.5 g/L 내지 약 50.0 g/L의 염 농도를 갖는 배지에서 배양될 수 있다. 임의적으로, 트라우스토키트리드는 약 0.5 g/L 내지 약 35 g/L(가령, 약 18 g/L 내지 약 35 g/L)의 염 농도를 갖는 배지에서 배양된다. 임의적으로, 본원에서 기술된 트라우스토키트리드는 저염 농도에서 성장할 수 있다. 예를 들면, 트라우스토키트리드는 약 0.5 g/L 내지 약 20 g/L(가령, 약 0.5 g/L 내지 약 15 g/L)의 염 농도를 갖는 배지에서 배양될 수 있다. 상기 배양 배지는 임의적으로 NaCl을 함유한다. 임의적으로, 상기 배지는 천연 또는 인공 해염 및/또는 인공 해수를 함유한다.
상기 배양 배지는 나트륨 원천으로 비-염화물-함유 나트륨 염을 함유할 수 있다. 본 발명에 따른 방법에 사용하기에 적합한 비-염화물 나트륨 염의 예로는 소다회(탄산나트륨염과 산화나트륨의 혼합물), 탄산나트륨, 중탄산나트륨, 황산나트륨 및 이들의 혼합물을 포함하나, 이에 국한되지 않는다(가령, U.S. 특허 번호 5,340,742 및 6,607,900, 이의 각 전체 내용은 본원의 참고자료에 통합된다). 예를 들면, 전체 나트륨의 상당 부분은 비-염화물 염으로 공급될 수 있고, 배양 배지에서 전체 나트륨의 약 100%, 75%, 50%, 또는 25% 미만은 염화나트륨으로 공급된다.
트라우스토키트리드 배양용 배지는 임의의 다양한 질소원을 함유할 수 있다. 예시적인 질소원은 암모늄 용액(가령, H2O 안에 NH4), 암모늄 또는 아민염(가령, (NH4)2SO4, (NH4)3PO4, NH4NO3, NH4OOCH2CH3(NH4Ac)), 펩톤, 트립톤, 효모 추출물, 맥아 추출물, 어분(fish meal), 글루탐산 나트륨, 대두 추출물, 카사미노산 및 증류주 곡물을 포함한다. 적합한 배지에서 질소원의 농도는 전형적으로 약 1 g/L 내지 약 25 g/L 사이, 및 이 안에 내포된 범위가 된다.
상기 배지는 임의적으로 인산염, 이를 테면 인산칼륨 또는 인산나트륨을 함유한다. 배지에 무기 염 및 미량 영양분은 황산암모늄, 중탄산나트륨, 오르토바나데이트 나트륨, 크로메이트 칼륨, 몰리브데이트 나트륨, 셀레노우스 산, 황산니켈, 황산구리, 황산아연, 염화코발트, 염화철, 염화망간, 염화칼슘, 및 EDTA를 포함할 수 있다. 비타민, 이를 테면 피리독신 염산염, 티아민 염산염, 펜토테네이트 칼슘, p-아미노벤조산, 리보플라빈, 니코틴산, 바이오틴, 엽산, 그리고 비타민 B12가 포함될 수 있다.
배지의 pH는 적절한 경우 산 또는 염기를 이용하고/거나, 질소원을 이용하여, 적절하게는 3.0 내지 10.0, 그리고 이 안의 범위로 조정될 수 있다. 임의적으로, 상기 배지는 살균될 수 있다.
일반적으로 미생물 배양에 이용되는 배지는 액체 배지다. 그러나, 미생물 배양에 이용되는 배지는 고체 배지일 수 있다. 본원에서 논의된 바와 같이 탄소 및 질소원에 추가하여, 고체 배지는 구조적 지지를 제공하고/거나 배지가 고체 형태가 되도록 하는 하나 이상의 성분들(가령, 한천 또는 아가로스)을 함유할 수 있다.
임의적으로, 생성된 바이오매스는 이 바이오매스 안에 존재하는 바람직하지 못한 물질을 비활성화시키기 위하여 저온살균된다. 예를 들면, 상기 바이오매스는 화합물 분해 물질을 비활성화시키기 위하여 저온살균될 수 있다. 상기 바이오매스는 발효 배지 안에 존재하거나, 저온살균(pasteurization) 단계를 위하여 발효 배지로부터 단리될 수 있다. 저온살균 단계는 이 바이오매스 및/또는 발효 배지를 상승된 온도로 가열함으로써 실행될 수 있다. 예를 들면, 상기 바이오매스 및/또는 발효 배지는 약 50℃ 내지 약 95℃(가령, 약 55℃ 내지 약 90℃ 또는 약 65℃ 내지 약 80℃)로 가열될 수 있다. 임의적으로, 상기 바이오매스 및/또는 발효 배지는 약 30 분 내지 약 120 분(가령, 약 45 분 내지 약 90 분, 또는 약 55 분 내지 약 75 분) 동안 가열될 수 있다. 저온살균은 적합한 가열 수단, 예를 들면, 직접 증기 주입을 이용하여 실행될 수 있다.
임의적으로, 저온살균 단계는 실시되지 않는다. 다르게 표현하면, 본원에서 교시되는 방법은 임의적으로 저온살균 단계가 결여되어 있다.
임의적으로, 당업자에게 현재 공지된 것들을 비롯하여 다양한 방법에 따라 상기 바이오매스는 수거될 수 있다. 예를 들면, 원심분리(가령, 고체-분사 원심분리) 또는 여과(가령, 직교류(cross-flow) 여과)를 이용하여 발효 배지로부터 상기 바이오매스는 수거될 수 있다. 임의적으로, 수거 단계는 세포 바이오매스의 신속한 수거를 위한 침전 물질(가령, 인산 나트륨 또는 염화칼슘)의 사용을 포함한다.
임의적으로, 상기 바이오매스는 물로 세척된다. 임의적으로, 상기 바이오매스는 최대 약 20% 고체를 가지도록 농축된다. 예를 들면, 상기 바이오매스는 약 5% 내지 약 20% 고체, 약 7.5% 내지 약 15% 고체, 또는 약 5% 내지 약 20% 고체, 또는 언급된 범위 안의 임의의 백분율로 농축될 수 있다. 임의적으로, 상기 바이오매스는 약 20% 이하의 고체, 약 19% 이하의 고체, 약 18% 이하의 고체, 약 17% 이하의 고체, 약 16% 이하의 고체, 약 15% 이하의 고체, 약 14% 이하의 고체, 약 13% 이하의 고체, 약 12% 이하의 고체, 약 11% 이하의 고체, 약 10% 이하의 고체, 약 9% 이하의 고체, 약 8% 이하의 고체, 약 7% 이하의 고체, 약 6% 이하의 고체, 약 5% 이하의 고체, 약 4% 이하의 고체, 약 3% 이하의 고체, 약 2% 이하의 고체, 또는 약 1% 이하의 고체로 농축될 수 있다.
제공된 방법은 임의적으로, 상기 바이오매스 또는 미생물로부터 다중불포화 지방산을 단리하는 것을 포함한다. 다중불포화 지방산의 단리는 당업자에게 현재 공지된 것들을 비롯하여 하나 이상의 다양한 방법에 따라 실행될 수 있다. 예를 들면, 다중불포화 지방산을 단리하는 방법은 U.S. 특허 번호 8,163,515에서 기술되며, 이 특허는 전문이 본원의 참고자료에 편입된다. 임의적으로, 상기 배지는 다중불포화 지방산의 단리에 앞서 멸균되지 않는다. 임의적으로, 멸균이란 온도의 증가를 포함한다. 임의적으로, 상기 미생물에 의해 만들어지고, 제공된 방법에 의해 단리된 다중불포화 지방산은 중간 쇄(medium chain) 지방산이다. 임의적으로, 상기 하나 이상의 다중불포화 지방산은 알파 리놀렌산, 아라키돈산, 도코사헥사엔산, 도코사펜타엔산, 에이코사펜타엔산, 감마-리놀렌산, 리놀레산, 리놀렌산 및 이들의 조합으로 구성된 군에서 선택된다.
본원에서 기술된 방법에 따라 생산된 다중불포화 지방산(PUFA) 및 다른 지질을 포함하는 오일은 이들의 생물학적, 영양학적 또는 화학적 성질을 이용하는 임의의 다양한 용도에 이용될 수 있다. 따라서, 제공된 방법은 수거된 임의적으로 임계 용적의 일부분으로부터 오일을 단리하는 것을 포함한다. 임의적으로, 상기 오일은 연료, 가령, 생물연료를 생산하는데 이용된다. 임의적으로, 상기 오일은 제약, 식품 보충제, 동물 사료 첨가제, 화장품, 및 이와 유사한 것들에 이용될 수 있다. 본원에서 기술된 방법에 따라 생산된 지질은 다른 화합물의 생산에 중간물질로 또한 사용될 수 있다.
예를 들면, 제공된 방법을 이용하여 배양된 미생물에 의해 생산된 오일은 지방산을 포함할 수 있다. 임의적으로, 상기 지방산은 알파 리놀렌산, 아라키돈산, 도코사헥사엔산, 도코사펜타엔산, 에이코사펜타엔산, 감마-리놀렌산, 리놀레산, 리놀렌산 및 이들의 조합으로 구성된 군에서 선택된다. 임의적으로, 상기 오일은 트리글리세리드를 포함한다. 임의적으로, 상기 오일은 팔미트산(C16:0), 미리스틴산(C14:0), 팔미토올레산(C16:1(n-7)), cis-바크센산(C18:1(n-7)), 도코사펜타엔산(C22:5(n-6)), 도코사헥사엔산(C22:6(n-3)) 및 이들의 조합으로 구성된 군에서 선택된 지방산을 포함한다.
임의적으로, 본원에서 기술된 방법에 따라 생산된 지질은 최종 산물(가령, 식품 또는 사료 보충제, 유아용 조제분유, 약제, 연료, 등등)에 혼입될 수 있다. 상기 지질이 혼입될 수 있는 적합한 식품 또는 사료 보충제는 음료수, 이를 테면, 우유, 물, 스포츠 드링크, 에너지 드링크, 차 및 쥬스; 당제(confections), 이를 테면, 사탕, 젤리 및 비스킷; 지방-함유 식품 및 음료, 이를 테면 유제품; 가공된 식품, 이를 테면, 연질미(또는 포리지(porridge)); 유아용 조제분유; 아침식사용 시리얼; 또는 이와 유사한 것들을 포함한다. 임의적으로, 하나 이상의 생산된 지질은 식사 보충제, 예를 들면, 비타민 또는 멀티비타민에 혼입될 수 있다. 임의적으로, 본원에서 기술된 방법에 따라 생산된 지질은 식사 보충제 안에 함유될 수 있고, 임의적으로 식품 또는 사료(가령, 식품 보충제)의 성분 안에 직접 혼입될 수 있다.
본원에서 기술된 방법에 의해 생산된 지질이 혼입될 수 있는 사료의 예로는 애완동물 사료, 이를 테면 고양이 사료; 개 사료; 관상어, 양식어류, 또는 갑각류 등등의 사료; 농장 동물용 사료(가축 및 수중배양에서 자라는 물고기 또는 갑각류용 사료 포함)를 포함한다. 본원에서 기술된 방법에 따라 생산된 지질이 혼입될 수 있는 식품 또는 사료 재료는 의도된 수령체인 유기체의 입맛에 맛있는 것이 바람직하다. 이 음식 또는 사료 재료는 음식 재료(가령, 고체, 액체, 연질)로 현재 공지된 임의의 물리적 성질을 가질 수 있다.
임의적으로, 하나 이상의 생산된 화합물(가령, PUFA)은 기능 또는 약제 산물에 혼입될 수 있다. 이러한 기능적 또는 약제의 예로는 다양한 유형의 테블릿, 캡슐, 마실 수 있는 물질 등을 포함한다. 임의적으로, 기능제 또는 약제는 국소 적용에 적합하다. 투약형은 예를 들면, 캡슐, 오일, 과립, 과립 서브틸레(granula subtilae), 분말(pulveres), 타벨레(tabellae), 피루레(pilulae), 트로키제(trochisci), 또는 이와 유사한 것들을 포함할 수 있다.
본원에서 기술된 방법에 의해 생산된 오일 또는 지질은 임의의 다양한 다른 물질과 조합되어, 본원에서 기술된 바와 같은 산물에 혼입될 수 있다. 예를 들면, 이러한 화합물은 하나 이상의 결합제 또는 충전제, 킬레이팅 물질, 안료, 계면활성제, 수분제, 점성 조절제, 농후제, 진정제, 향수, 보존제 등 또는 이의 임의의 조합과 복합될 수 있다.
개시된 방법 및 조성물에 이용될 수 있거나, 이와 병용하여 사용될 수 있거나, 이의 제조에 사용될 수 있거나, 이의 산물인 재료, 조성물 및 성분들이 개시된다. 이들 재료 및 다른 재료들은 본원에서 개시되며, 이들 재료의 조합, 하위부분, 상호작용, 집단 등이 개시될 때, 이들 화합물의 각각의 다양한 개별적 그리고 집합적 조합 및 순열의 특정 기준은 명시적으로 언급되지 않을 수 있으며, 이들 각각은 본원에서 특이적으로 고려되고, 기술되는 것으로 이해되어야 한다. 예를 들면, 방법이 개시되고, 논의되고, 상기 방법을 포함하는 다수의 분자에 대해 행해질 수 있는 다수의 변형이 논의된다면, 이러한 방법의 각각 그리고 모든 조합 및 순열, 그리고 가능한 변형은 명시적으로 다른 언급이 없는 한, 특이적으로 고려된다. 유사하게, 이들의 임의의 하위부분 또는 조합은 또한 특이적으로 고려되고, 기술된다. 이러한 개념은 공개된 조성물을 이용한 방법에서 단계들을 비롯한 이러한 개시의 모든 측면에 적용될 수 있지만, 이에 국한되지 않는다. 따라서, 만일 실행될 다양한 추가 단계들이 있다면, 이들 각 추가 단계는 기술된 방법의 임의의 특정 방법 단계 또는 단계들의 조합과 함께 실행될 수 있고, 이러한 조합 또는 조합의 하위단위가 특이적으로 고려되며, 기술된 것으로 간주되어야 한다는 것으로 이해해야 한다.
여기에 인용된 간행물과 인용된 자료는 본원의 참고자료에 편입된다.
하기 실시예는 본원에 기술된 방법 및 조성물의 특정 양상을 추가로 설명하기 위한 것이며, 청구 범위를 제한하려는 것은 아니다.
실시예
실시예
1. 재조합 트라우스토키트리드
에
의한
C5
탄소 대사
사실상, 크실로오스 환원효소/크실리톨 탈수소효소 경로와 크실로오스 이성화효소/크실룰로오스 키나제 경로의, 2개의 크실로오스 대사 경로가 존재한다(도 1). ONC-T18은 이들 두 경로의 유전자를 인코딩하며, 상기에서 설명한 바와 같이, 크실로오스 배지에서 성장할 때, 크실리톨의 축적으로 증명되는 바와 같이, 크실로오스 환원효소/크실리톨 탈수소효소 경로가 더 우세하다. 상기 이성화효소/키나제 경로는 산화환원 공-인자들에 의존적이지 않기 때문에, ONC-T18의 이성화효소 유전자의 과다-발현은 크실로오스가 크실룰로오스로 전환함에 있어서 공-인자 의존성을 제거한다. 본원에서 도 2 및 3에서 보여진 바와 같이, ONC-T18을 이용한 전사체학 연구에서 이의 크실로오스 이성화효소 및 추정 크실룰로오스 키나제 유전자는 대부분 포도당 고갈 동안 발현되었으며; 반면, 크실로오스 환원효소 및 크실리톨 탈수소효소를 인코딩하는 것으로 추정적으로 확인된 유전자는 구성적으로 발현되었다.
T18 이성화효소는 효모 INVSc1에서 his-테깅(tagging) 및 과다발현 후, 금속-친화력 크로마토그래피에 의해 정제되었다. 양성 대조로써, 대장균 균주 W3110의 his-태깅된 XylA가 과다-발현되었고, 대장균 균주 BL21(DE3)plysS로부터 정제되었다. 정제된 단백질의 단백질 농도는 표준 Bradford 분석에 의해 측정되었다. T18 이성화효소 및 대장균 이성화효소의 활성에서 온도의 영향은 5mM MgATP, 50mM Hepes(pH 7.4), 10 mM MgCl2에서 5 μg의 단백질 및 0.75 g/L의 크실로오스 또는 크실룰로오스를 이용하여 결정하였다. 반응물은 10℃, 25℃, 30℃, 37℃, 50℃, 60℃, 및 80℃에서 하룻밤 동안 배양되었다. 95℃에서 5 분간 열 비활성화에 의해 반응은 중단되었다. HPLC를 이용하여 반응이 분석되었고, 존재하는 당의 농도는 표준 곡선과 비교하여 피크 아래 면적으로부터 계산되었다. T18 이성화효소는 37℃ 이상의 온도에서 크실로오스 및 크실룰로오스 모두에서 더 높은 활성을 보유하였다(도 20a). 이것은 25℃ 내지 30℃의 온도에서 더 높은 활성을 보유한 대장균 이성화효소와 대조적이다(도 20b).
5 mM MgATP, 50 mM Hepes(pH 7.4), 10 mM MgCl2에서 0.75 g/L 크실로오스 또는 크실룰로오스와 함께, 이성화효소의 단백질 농도를 증가시키면서 배양함으로써, 분량-의존성이 결정되었다. 반응물은 30℃(대장균) 또는 50℃(T18)에서 하룻밤 동안 배양되었고, 그 다음 95℃에서 5 분간 열 비활성화에 의해 반응은 중단되었다. HPLC를 이용하여 반응이 분석되었고, 존재하는 당의 농도는 표준 곡선과 비교하여 피크 아래 면적으로부터 계산되었다. 크실로오스 및 크실룰로오스 모두에서 T18 이성화효소의 분량 의존성이 관찰되었다(도 21a 및 21b).
이 실시예는 ONC-T18을 비롯한 트라우스토키트리드 종에서 내인성 및/또는 이종성 크실로오스 대사 전이유전자를 발현시키기 위하여, 트라우스토키트리움 ONC-T18-유도된(ONC-T18) 알파-튜블린 프로모터의 사용을 설명한다. 그러나, 논의된 바와 같이, 다른 조절 요소들이 이용될 수 있다. 도 4 및 5는 차례로 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제 유전자를 포함하는 플라스미드 구조체를 보여준다. 본원에서 기술된 바와 같이, 크실로오스 대사 전이유전자는 숙주 게놈 안에 다중(≥8) 복사체로 존재한다. ONC-T18의 경우, 상기 변형된 유기체는 야생형(WT) 세포와 비교하였을 때, 크실로오스의 대사 증가를 실증하였다. 예를 들면, 내인성 크실로오스 이성화효소 유전자(서열번호 2)를 발현하도록 변형된 균주(균주 Iso-His #16) 및 내인성 크실로오스 이성화효소 유전자(서열번호 2) 및 크실룰로오스 키나제 유전자(서열번호 5)(Iso-His+xylB, 균주 7-7)를 발현하도록 변형된 균주는 모두 WT 균주보다 40% 더 많은 크실로오스를 사용하였다. Iso-His #16 및 7-7은 모두 WT 균주과 비교하여 차례로 40% 및 420% 적게 크실로오스를 크실리톨로 전환하였다. ONC-T18의 형질전환에 이용되는 구조체는 도 4 및 5에 나타낸다. ONC-T18 형질전환체는 BioRad's Biolistic PDS-1000/He Particle Delivery System (Hercules, CA)에서 기술된 표준 바이오리스틱(biolistics) 프로토콜을 이용하여 만들어졌다. 간략하게 설명하자면, 0.6 μm 금 입자는 2.5 μg의 선형화된 플라스미드 DNA(EcoRI, 37℃, 하룻밤)로 피복되었다. 피복된 금 입자들은 OD600 1.0에서 1 ml의 ONC-T18 세포로 미리 도말된 플레이트에 투하하는데 이용되었다. 투하(bombardment) 매개변수는 3 또는 6 cm의 표적 거리를 갖고, 1350 또는 1100 psi의 헬륨 압력을 이용하는 것을 포함하였다. 하룻밤 회복 후, 이 세포들을 플레이트로부터 씻어내었고, 선별 항생제(Zeo 250 μg/mL 및 hygro 400 μg/mL)가 함유된 배지 상에 도말하였다. 플레이트는 저항 콜로니를 확인하기 위하여 25℃에서 1주 동안 배양되었다. 생성된 형질전환체는 PCR 및 서든 블랏에 의해 스크리닝되었다.
표준 프로토콜을 이용하여 서든 블랏이 실행되었다. 간략하게 설명하자면, 대략적으로 20 μg의 게놈 DNA는 50 μL의 전체 용적 안에서 40 유닛(unit)의 BamHI 제한 효소로 37℃에서 하룻밤 동안 절단되었다. 7.2 μg의 각 절단된 시료는 디곡시게닌(DIG) DNA 분자량 표지 II(Roche, Basel, Switzerland)와 함께 50V에서 1.0% 아가로스 겔 상에서 대략적으로 1.5 시간 동안 이동되었다. 상기 겔을 250 mM HCl에 15 분 동안 침잠시킴으로써 이 겔에서 DNA는 탈퓨린화되었다. 이 겔은 15분간 2차례 세척을 위하여 0.5 M NaOH 및 1.5 M NaCl이 함유된 용액(pH 7.5) 안에 항온처리함으로써 추가 변성되었다. 그 다음 반응물은 15분간 2차례 세척을 위하여 0.5 M Tris-HCl(pH 7.5)에서 항온처리함으로써 중화되었다. 최종적으로, 상기 겔은 15분 동안 20X 염수-구연산 나트륨(SSC)에서 균등화되었다. DNA는 표준 전달 기구를 이용하여 양으로 하전된 나일론 막으로 이동되었다. UV Stratalinker를 이용하여 120,000 μJ에 노출됨으로써 DNA는 이 막에 고정되었다. PCR DIG Probe Synthesis Kit(Roche, Basel, Switzerland)를 이용하여 제조업자의 지시에 따라 DIG-라벨링된 프로브를 만들기 위하여 서든 블랏 프로브가 생성되었다. 나일론 막에 고정된 DNA는 20 mL의 DIG EasyHyb 용액(DIG EasyHyb Granules, Roche, Basel, Switzerland)으로 사전혼성화되었다. DIG-라벨링된 프로브는 40 μL의 ble-프로브 반응 혼합물을 300 μL의 ddH2O에 추가함으로써 변성되었고, 99℃에서 5 분간 항온처리되었다. 이 용액은 그 다음 20 mL의 DIG 혼성화 용액에 추가하여 프로브 용액을 만들었다. 그 다음 상기 프로브 용액은 DNA-고정된 나일론 막에 추가되었으며, 53℃에서 하룻밤 동안 항온처리되었다. 다음 날, 막은 실온에서 2X SSC, 0.1% SDS에서 2회 세척되었다. 상기 막은 68℃에서 15 분 동안 0.1X SSC, 0.1% SDS에서 2회 더 세척되었다. 탐지용으로, 상기 막은 DIG 세척 및 차단 완충 세트(Roche, Basel, Switzerland)를 이용하여 제조업자의 지침에 따라 세척 및 차단되었다. DIG 핵산 탐지 키트(Roche, Basel, Switzerland)로부터 항-DIG-AP 콘쥬게이팅된 항체는 탐지용으로 사용되었다. 2 μL의 항체 용액을 20mL 탐지 용액에 추가하였고, 실온에서 30 분 동안 막과 함께 항온처리하였다. 그 다음 블랏은 키트에서 제공되는 세척 완충액에 침잠시켰다. 시각화를 위하여 CDP-Star(Roche, Basel, Switzerland)가 사용되었다. 10 μL의 CDP-star 용액은 1 mL의 탐지 용액 안에서 막 위에서 항온처리되었고, 이때 이 용액은 막 위에 유지되도록 "쉬트-프로텍터(sheet-protector)" 플라스틱 층으로 덮었다. ChemiDoc 영상화 시스템(BioRad Laboratories, Hercules, CA)을 이용하여 신호는 즉각적으로 탐지되었다.
코돈 최적화된 ble 유전자는 T18B α-튜블린 프로모터 및 터미네이터 요소(도 6)의 제어 하에 클로닝되었다. 상기 이성화효소 유전자는 T18B로부터 상기 발현된 단백질(Iso-His)의 N-말단에 6개의 히스티딘 태그를 추가하는 방식으로 클로닝되었다. 크실로오스 이성화효소 효소 활성은 효모에서 상기 히스티딘-태깅된 단백질의 과다-발현 및 정제에 의해 확인되었다. 상기 이성화효소 유전자(도입된 6개-히스티딘 태그)는 ble 유전자 및 2A 서열의 하류 유전자의 클로닝에 의해 α-튜블린 프로모터 및 터미네이터의 제어 하에 클로닝되었다(도 4 및 도 6). 이 플라스미드(pALPHTB-B2G-hisIso)를 이용한 T18B의 바이오블리스틱 형질전환으로 제오신(zeo) 내성 형질전환체가 생성되었다. 이 과정으로부터 많은 형질전환체 균주가 수득되었다. 이들 균주중 전이유전자의 하나의 복사체를 함유하는 예시적인 균주 #6과 전이유전자의 8개 복사체를 함유하는 예시적인 균주#16, 2개를 보여주었다(도 7).
T18B 게놈 안에 Iso-His 전이유전자의 삽입은 PCR 및 서든 블랏 분석으로 확인되었다(도 7). 정량적으로, 이들 데이터는 균주 #6에서 전이유전자의 단일 복사체의 존재, 그리고 균주 #16에서 단일 부위에 다중의, 연쇄체(concatameric) 전이유전자 복사체의 존재를 보여주었다. Iso-His 전이유전자 삽입체의 정확한 수는 게놈 DNA 상에서 qPCR에 의해 결정되었다(도 8). 이들 데이터는 균주 #6에서 전이유전자의 1개 복사체와 균주 #16에서 전이유전자의 8개 복사체의 존재를 보여주었다(도 8). 복사체 수의 증가가 발현 수준의 증가와 관련있는지를 시험하기 위하여, WT, Iso-His #6 및 Iso-His #16 T18B 세포로부터 mRNA를 단리하였고, qRT-PCR을 실행하였다. 도 11은 전이유전자의 단일 복사체를 함유하는 균주 #6과 비교하여, 전이유전자의 8개 복사체가 함유된 균주 #16 세포에서 Iso-His 전사체 발현의 상당한 증가를 보여주었다. WT 세포에서는 탐지가능한 Iso-His 전사체는 없었다(도 11). mRNA의 발현이 증가된 이성화효소 효소 활성과 관련있는지를 평가하기 위하여, WT, Iso-His #6 및 Iso-His #16 세포로부터 세포 추출물을 수거하였다. 균주 #6 및 WT 세포와 비교하여, 균주 #16 세포에서 강화된 이성화효소 효소 활성이 관찰되었다(도 12). 끝으로, 크실로오스를 대사하는 균주 #16의 능력이 크실로오스 고갈 분석(도 14)에서 검사되었고, 이는 WT 세포와 비교되었다. 이들 플라스크 발효는 크실로오스를 대사하는 능력을 실증하였고, 크실로오스가 크실리톨로 전환되는 양을 정량하였다. 따라서, 도 14는 WT 세포와 비교하였을 때, Iso-His 균주 #16에서 크실로오스 대사가 증가되었고, 크실리톨의 생산이 상당히 줄었음을 보여준다.
플라스크 분석을 위하여, 배지에서 2 내지 3일 동안 세포를 성장시켰다. 펠렛은 당이 함유되지 않은 배지 2(9 g/L NaCl, 4 g/L MgSO4, 100 mg/L CaCl2, 5 mg/L FeCl3, 20 g/L (NH4)2SO4, 0.86 g/L KH2PO4, 150 μg/L 비타민 B12, 30 μg/L 바이오틴, 6 mg/L 티아민 염산염, 1.5 mg/L 염화 코발트(II), 3 mg/L 염화망간)에서 2회 세척되었다. 그 다음, 20 g/L 포도당 및 50 g/L 크실로오스가 함유된 최소 배지에 OD600은 0.05가 되도록 세척된 세포가 접종되었다. 다양한 시점에서 시료를 취하고, 상청액 안에 남아있는 당의 양은 HPLC를 이용하여 분석되었다. 도 22a, 22b, 22c 및 22d에서 볼 수 있는 것과 같이, WT와 비교하였을 때, 크실로오스 이성화효소 유전자 복사체 수는 증가되었고, 크실로오스 사용은 최대 40% 상승되었고, 크실리톨 생산은 20% 감소되었다.
그 다음, 대장균 xylB 유전자를 도입시키기 위하여 2 라운드의 형질전환을 위하여 Iso-His 균주 #16은 모계 균주로 사용되었다. 이 유전자는 히그로마이신(hygro) 선별 하에 도입되었다. pChlamy_3의 hygro 유전자, 2A 서열, 및 T18B 코돈 최적화된 W3110 대장균 xylB 유전자는 T18B iso-his #16에서 발현을 위하여 T18B α-튜블린 프로모터 및 터미네이터 요소의 제어 하에 클로닝되었다(도 5). T18B 이성화효소와 협력하여 작용하는 대장균 크실룰로오스 키나제의 시험관내 능력은 효모에서 히스티딘-태깅된 단백질을 과다-발현시키고, 정제하고, 크실로오스 및 크실룰로오스와의 효소 반응에 의해 확인되었다. T18B iso-his 균주 #16의 xylB 플라스미드(pJB47)에 의한 바이오리스틱 형질전환으로 hygro 및 zeo 내성 형질전환체가 생성되었다. T18B 게놈 안에 hygro-2A-xylB 유전자의 삽입은 PCR 및 서든 블랏 분석에 의해 확인되었다(도 9). 정량적으로, 이들 데이터는 균주 #7-3에서 전이유전자의 단일 복사체의 존재, 그리고 균주 #7-7에서 단일 부위에 다중의, 연쇄체(concatameric) 전이유전자 복사체의 존재를 보여주었다. xylB 유전자 삽입체의 수는 게놈 DNA 단리물 상에서 qPCR에 의해 결정되었다(도 10). 도 10은 균주 7-7에서 전이유전자의 16개 삽입체와 균주 7-3에서 1개의 복사체를 보여주었다. 상기 전이유전자의 다중 복사체가 시험관내 강화된 크실로오스 대사를 부여하는지를 결정하기 위하여, 세포 추출물 분석이 실행되었고, 크실로오스를 대사하는 세포 추출물의 능력이 분석되었다(도 13). 크실로오스를 대사하는 형질전환체 세포의 능력은 플라스크-기반의 크실로오스 고갈 분석을 통하여 검사되었다(도 15). 이 실험에서, WT 세포는 최소량의 크실로오스를 소비하고, 최대량의 크실리톨을 만들었다. 균주 Iso-His #16, 7-3 및 7-7은 모두 유사한 양의 크실로오스를 소비하였지만; 오직 xylB 전이유전자의 다중 복사체를 함유하는 7-7만은 상당한 양의 크실리톨을 만들지 않았다. 끝으로, 균주 Iso-His #16 및 7-7은 5L 발효 용기내 포도당 및 크실로오스가 함유된 배지에서 시험되었다. 77 시간의 발효 동안, 균주 Iso-His #16은 대략적으로 8%의 크실로오스를 크실리톨로 전환시킨 반면, 균주 7-7은 대략적으로 2%의 크실로오스를 크실리톨로 전환시켰다. 이 발효에서 크실리톨 축적을 도 16에서 제시한다.
플라스크 분석을 위하여, 배지에서 2 내지 3일 동안 세포를 성장시켰다. 당이 함유되지 않은 배지에서 펠렛을 2회 세척하였다. 20 g/L: 50 g/L 포도당: 크실로오스가 함유된 최소 배지에 OD600은 0.05가 되도록 세척된 세포가 접종되었다. 다양한 시점에서 시료를 취하고, 상청액 안에 남아있는 당의 양은 HPLC를 이용하여 분석되었다. 도 23a, 23b, 23c 및 23d에서, WT와 비교하였을 때, 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제 모두를 과다-발현하는 균주에서 최대 50% 이상의 크실로오스가 사용되었고, 크실리톨은 80% 감소가 관찰되었다.
이들 균주를 추가 분석하기 위하여, 상기 균주는 병렬 5L Sartorius 발효기에서 성장되었다. 최초 배지는 다른 기초 배지 성분들과 함께, 20 g/L 포도당 및 50 g/L 크실로오스를 함유하였다. 두 배양물은 720 RPM에서 일정한 혼합 및 1 Lpm의 대기로 일정한 환기를 하면서, 28℃ 및 5.5 pH에서 유지된 이들 배양은 16시간 동안 포도당 공급을 받고, 이어서 8시간의 고갈 시간을 가졌다. 이 주기는 3 회 완료되었다. 고갈 기간 동안, 매 0.5 시간마다 10mL 시료를 취하였다. 이들 시료 안에 포도당, 크실로오스 및 크실리톨 농도는 HPLC를 이용하여 정량화되었다. 추가 바이오매스 및 오일 함량 정량화를 위하여 주기적으로 더 많은 50mL 시료를 취하였다. 포도당 공급 속도는 배양 배출 가스에서 탐지된 CO2에 의해 정량화된 포도당 소모 속도와 일치하였다. 도 24에 나타낸 바와 같이, 7-7 균주는 이들 조건하에서 WT보다 최대 52% 더 많은 크실로오스를 이용하였다.
서든 블랏 분석에 의하면, 균주 Iso-His #16은 이성화효소 전이유전자의 8개 삽입체를 함유한다는 것이 관찰되었다(도 8). 이와 같은 예상치못한 다중 삽입은 단일 복사체를 품고 있는 균주과 비교하여, 이성화효소 유전자 발현의 증가를 초래하였고(도 11), 뿐만 아니라 시험관내 이성화효소의 활성도 증가시켰다(도 12). 균주 Iso-His #16은 이성화효소 전이유전자의 단일 복사체를 품고 있는 균주보다 크실로오스 생산성이 증가되었음을 실증하였다(도 14).
유사하게, Iso -His + xylB 형질전환체 안에서, 클론 중 하나(Iso -His + xylB 7-7) 또한 xylB 유전자의 다중 삽입체를 보유하였고(도 10), 이로써 이 세포 안에서 크실로오스 이성화효소 및 크실룰로오스 키나제의 생체내 활성이 증가되었다(도 13). 이 클론은 부모 균주, Iso-His #16보다 훨씬 더 많은 크실로오스를 이용할 수 있으면서, 동시에 상당히 더 적은 양의 크실리톨을 생산하였다(도 15). 더욱이 Iso-His + xylB 7-7은 크실로오스 존재하에 WT 보다 더 많은 바이오매스를 생산하였다. 이들 두 균주는 이성화효소 및 키나제 유전자의 존재가 중요하며, 뿐만 아니라 삽입체의 수도 마찬가지로 중요하다는 것을 보여주었다.
"7-7" 균주를 함유하는 iso-his 및 xylB를 더 최적화하기 위하여, 이 균주는 크실로오스 전달체로 형질전환되었다. 도 17은 형질전환용 예시적인 구조체를 보여준다. 사용되는 크실로오스 전달체의 예로는 At5g17010 및 At5g59250(아라비돕시스 탈리아나(Arabidopsis thaliana)), Gfx1 및 GXS1(칸디다), AspTx(아스퍼길러스), 그리고 Sut1(피치아)를 포함하나, 이에 국한되지 않는다. 형질전환을 위하여 Gxs1(서열번호 23)이 선별되었다. 결과는 도 19a, 19b 및 19c에 나타낸다. GXS1을 함유하는 형질전환체 36-2, 36-9 및 36-16은 7-7 및 WT 균주보다 더 많은 크실로오스를 사용하였다. 이들은 또한 WT 및 7-7 균주보다 더 느리게 포도당을 사용한다. 데이터는 GXS1 함유하는 균주에 의해 초기 단계에서 크실로오스 및 포도당을 모두 사용한다는 것을 실증한다. 더욱이, GXS1 함유하는 균주에 의해 만들어진 크실리톨의 백분율은 WT 및 7-7 균주 보다 더 낮았다.
크실로오스의 대사에서 당 전달체의 효과를 더 분석하기 위하여, 아스퍼길러스의 코돈 최적화된 크실로오스 전달체 AspTX(An11g01100) 및 칸디다의 Gxs1을 7-7 균주(isohis + xylB)에 도입시켰다. 도 25는 알파-튜블린 aspTx-neo 및 알파-튜블린 gxs1-neo 구조체를 나타낸다. T18 형질전환체는 BioRad's Biolistic PDS-1000/He Particle Delivery System에서 기술된 표준 바이오리스틱(biolistics) 프로토콜을 이용하여 만들어졌다. 간략하게 설명하자면, 0.6 μm 금 입자들은 2.5 μg의 선형화된 플라스미드 DNA(EcoRI, 37℃, o/n)로 피복되었고, 상기 피복된 금 입자들은 1 ml의 T18 세포를 OD600 1.0에서 이미 도포된 WD 플레이트에 투하(bombardment)하는데 이용되었다. 투하 매개변수는 3 또는 6 cm의 표적 거리를 갖고, 1350 또는 1100 psi의 헬륨 압력을 이용하는 것을 포함하였다. 하룻밤 회복 후, 이 세포들을 플레이트로부터 씻어내었고, 선별 항생제(G418, 2 mg/mL)가 함유된 배지 상에 도말하였다. 플레이트는 저항 콜로니를 확인하기 위하여 25℃에서 1주 동안 배양되었다. 생성된 형질전환체는 PCR 및 서든 블랏에 의해 스크리닝되었다(도 26).
표준 프로토콜을 이용하여 서든 블랏이 실행되었다. 간략하게 설명하자면, 대략적으로 20 μg의 게놈 DNA는 50 μL의 전체 용적 안에서 40 유닛의 BamHI 제한 효소로 37℃에서 o/n/ 동안 절단되었다. 7.2 μg의 각 절단된 시료는 디곡시게닌(DIG) DNA 분자량 표지 II(Roche)와 함께 50V에서 1.0% 아가로스 겔 상에서 대략적으로 1.5 시간 동안 이동되었다. 상기 겔을 250 mM HCl에 15 분 동안 침잠시킴으로써 이 겔에서 DNA는 탈퓨린화되었다. 이 겔은 15분간 2차례 세척을 위하여 0.5 M NaOH 및 1.5 M NaCl이 함유된 용액(pH 7.5) 안에서 항온처리함으로써 추가 변성되었다. 그 다음 반응물은 15분간 2차례 세척을 위하여 0.5 M Tris-HCl(pH 7.5)에서 항온처리함으로써 중화되었다. 최종적으로, 상기 겔은 15분 동안 20X 염수-구연산 나트륨(SSC)에서 균등화되었다. DNA는 표준 전달 기구를 이용하여 양으로 하전된 나일론 막(Roche)으로 이동되었다. UV Stratalinker를 이용하여 120,000 μJ에 노출됨으로써 이 막에 DNA가 고정되었다. PCR DIG Probe Synthesis Kit(Roche)를 이용하여 제조업자의 지시에 따라 DIG-라벨링된 프로브를 만들기 위하여 서든 블랏 프로브가 생성되었다. 나일론 막에 고정된 DNA는 20 mL의 DIG EasyHyb 용액(DIG EasyHyb Granules, Roche)으로 사전혼성화되었다. DIG-라벨링된 프로브는 40 μL의 ble-프로브 반응 혼합물을 300 μL의 ddH2O에 추가함으로써 변성되었고, 99℃에서 5 분간 항온처리되었다. 이 용액은 그 다음 20 mL의 DIG 혼성화 용액에 추가하여 프로브 용액을 만들었다. 그 다음 상기 프로브 용액은 DNA-고정된 나일론 막에 추가되었으며, 53℃에서 하룻밤 동안 항온처리되었다. 다음 날, 막은 RT에서 2X SSC, 0.1% SDS에서 2회 세척되었다. 상기 막은 68℃에서 15 분 동안 0.1X SSC, 0.1% SDS에서 2회 더 세척되었다. 탐지용으로, 상기 막은 DIG 세척 및 차단 완충 세트(Roche)를 이용하여 제조업자의 지침에 따라 세척 및 차단되었다. DIG 핵산 탐지 키트(Roche)로부터 항-DIG-AP 콘쥬게이팅된 항체는 탐지용으로 사용되었다. 2 μL의 항체 용액을 20mL 탐지 용액에 추가하였고, RT에서 30 분 동안 막과 함께 항온처리하였다. 그 다음 블랏은 키트에서 제공되는 세척 완충액에 침잠시켰다. 시각화를 위하여 CDP-Star(Roche)가 사용되었다. 10 μL의 CDP-star 용액은 1 mL의 탐지 용액 안에서 막 위에서 항온처리되었고, 이때 이 용액은 막 위에 유지되도록 "쉬트-프로텍터" 플라스틱 층으로 덮었다. ChemiDoc 영상화 시스템을 이용하여 신호는 즉각적으로 탐지되었다.
플라스크 분석을 위하여, 배지에서 2 내지 3일 동안 세포를 성장시켰다. 펠렛은 당이 함유되지 않은 배지 2(9 g/L NaCl, 4 g/L MgSO4, 100 mg/L CaCl2, 5 mg/L FeCl3, 20 g/L (NH4)2SO4, 0.86 g/L KH2PO4, 150 μg/L 비타민 B12, 30 μg/L 바이오틴, 6 mg/L 티아민 염산염, 1.5 mg/L 염화 코발트(II), 3 mg/L 염화망간)에서 2회 세척되었다. 그 다음, 20 g/L 포도당 및 20 g/L 크실로오스가 함유된 배지 2에 OD600은 0.05가 되도록 세척된 세포가 접종되었다. 도 27a, 27b, 27c 및 27d에서 나타낸 바와 같이, 크실로오스 이성화효소, 크실룰로오스 키나제의 발현, 및 크실로오스 전달체의 발현으로 부모계 균주 7-7보다 71% 더 많이 크실로오스를 사용하게 되었고, 40% 더 적은 양의 크실리톨이 생산되게 하였다.
플라스크 분석을 위하여, 배지에서 2 내지 3일 동안 세포를 성장시켰다. 염수에서 펠렛을 2회 세척하였다. 그 다음, 포도당 대신 60 g/L 크실로오스가 함유된 배지에 OD600은 0.05가 되도록 세척된 세포가 접종되었다. 다양한 시점에서 시료를 취하고, 상청액 안에 남아있는 당의 양은 HPLC를 이용하여 분석되었다. 도 28은 주요 탄소원으로 크실로오스가 함유된 배지에서 T18 성장은 이성화효소 및 키나제 모두의 과다-발현을 요구한다는 것을 보여준다. 이 배경에서 상기 전달체의 발현은 이 배지에서 크실로오스 사용을 유의적으로 증가시키지 않았다.
대체 공급원료로부터 탄소를 함유하는 배지에서 T18 7-7 및 전달체 균주에 의한 강화된 크실로오스 사용 강화가 관찰되었다. 플라스크 분석을 위하여, 배지에서 2 내지 3일 동안 세포를 성장시켰다. 0.9% 염수 용액에서 펠렛을 2회 세척하였다. 실험실 등급의 포도당 및 삼림에서 얻은 대체 공급원료에서 포도당 및 크실로오스 조합으로 된, 20 g/L 포도당: 50 g/L 크실로오스를 함유하는 배지 2에 OD600nm는 0.05가 되도록 세척된 세포가 접종되었다. 다양한 시점에서 시료를 취하고, 상청액 안에 남아있는 당의 양은 HPLC를 이용하여 분석되었다. 도 29a 및 29b에 나타낸 바와 같이, 대체 공급원료로부터 당이 포함된 배지에서 전달체를 인코딩하는 T18 7-7 균주는 야생형, 또는 T18 7-7 보다 더 많은 양의 크실로오스를 사용하였다.
SEQUENCE LISTING
<110> Mara Renewables Corporation
<120> ENHANCING MICROALGAL METABOLISM OF XYLOSE
<130> 095523-1010533 (014WO1)
<140> PCT/IB2016/054185
<141> 2016-07-13
<150> US 62/191,983
<151> 2015-07-13
<150> US 62/354,444
<151> 2016-06-24
<160> 30
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 1723
<212> DNA
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gtgagactgc gaacggctca ttatatcagt tatgatttct tcggtatttt ctttatatgg 120
atacctgcag taattctgga attaatacat gctgagaggg cccgactgtt cgggagggcc 180
gcacttatta gagttgaagc caagtaagat ggtgagtcat gataattgag cagatcgctt 240
gtttggagcg atgaatcgtt tgagtttctg ccccatcagt tgtcgacggt agtgtattgg 300
actacggtga ctataacggg tgacggggag ttagggctcg actccggaga gggagcctga 360
gagacggcta ccacatccaa ggaaggcagc aggcgcgtaa attacccaat gtggactcca 420
cgaggtagtg acgagaaata tcaatgcggg gcgcttcgcg tcttgctatt ggaatgagag 480
caatgtaaaa ccctcatcga ggatcaactg gagggcaagt ctggtgccag cagccgcggt 540
aattccagct ccagaagcgt atgctaaagt tgttgcagtt aaaaagctcg tagttgaatt 600
tctggggcgg gagccccggt ctttgcgcga ctgcgctctg tttgccgagc ggctcctctg 660
ccatcctcgc ctcttttttt agtggcgtcg ttcactgtaa ttaaagcaga gtgttccaag 720
caggtcgtat gacctggatg tttattatgg gatgatcaga tagggctcgg gtgctatttt 780
gttggtttgc acatctgagt aatgatgaat aggaacagtt gggggtattc gtatttagga 840
gctagaggtg aaattcttgg atttccgaaa gacgaactac agcgaaggca tttaccaagc 900
atgttttcat taatcaagaa cgaaagtctg gggatcgaag atgattagat accatcgtag 960
tctagaccgt aaacgatgcc gacttgcgat tgcggggtgt ttgtattgga ccctcgcagc 1020
agcacatgag aaatcaaagt ctttgggttc cggggggagt atggtcgcaa ggctgaaact 1080
taaaggaatt gacggaaggg caccaccagg agtggagcct gcggcttaat ttgactcaac 1140
acgggaaaac ttaccaggtc cagacatagg taggattgac agattgagag ctctttcttg 1200
attctatggg tggtggtgca tggccgttct tagttggtgg agtgatttgt ctggttaatt 1260
ccgttaacga acgagacctc ggcctactaa atagcggtgg gtatggcgac atacttgcgt 1320
acgcttctta gagggacatg ttcggtatac gagcaggaag ttcgaggcaa taacaggtct 1380
gtgatgccct tagatgttct gggccgcacg cgcgctacac tgatgggttc aacgggtggt 1440
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cgtgctgggg ctagattttt gcaattatta atctccaacg aggaattcct agtaaacgca 1560
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cgattgaacg gtccgatgaa accatgggat gaccttttga gcgtttgttc gcgagggggg 1680
tcagaactcg ggtgaatctt attgtttaga ggaaggtgaa gtc 1723
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<223> Synthetic Construct
<400> 12
ggcgagcttc tccttgatgt 20
<210> 13
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic Construct
<400> 13
ggcgtcaacc acaaggagta 20
<210> 14
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic Construct
<400> 14
tgtcgttgat gaccttggca 20
<210> 15
<211> 1669
<212> DNA
<213> Piromyces sp.
<400> 15
gtaaatggct aaggaatatt tcccacaaat tcaaaagatt aagttcgaag gtaaggattc 60
taagaatcca ttagccttcc actactacga tgctgaaaag gaagtcatgg gtaagaaaat 120
gaaggattgg ttacgtttcg ccatggcctg gtggcacact ctttgcgccg aaggtgctga 180
ccaattcggt ggaggtacaa agtctttccc atggaacgaa ggtactgatg ctattgaaat 240
tgccaagcaa aaggttgatg ctggtttcga aatcatgcaa aagcttggta ttccatacta 300
ctgtttccac gatgttgatc ttgtttccga aggtaactct attgaagaat acgaatccaa 360
ccttaaggct gtcgttgctt acctcaagga aaagcaaaag gaaaccggta ttaagcttct 420
ctggagtact gctaacgtct tcggtcacaa gcgttacatg aacggtgcct ccactaaccc 480
agactttgat gttgtcgccc gtgctattgt tcaaattaag aacgccatag acgccggtat 540
tgaacttggt gctgaaaact acgtcttctg gggtggtcgt gaaggttaca tgagtctcct 600
taacactgac caaaagcgtg aaaaggaaca catggccact atgcttacca tggctcgtga 660
ctacgctcgt tccaagggat tcaagggtac tttcctcatt gaaccaaagc caatggaacc 720
aaccaagcac caatacgatg ttgacactga aaccgctatt ggtttcctta aggcccacaa 780
cttagacaag gacttcaagg tcaacattga agttaaccac gctactcttg ctggtcacac 840
tttcgaacac gaacttgcct gtgctgttga tgctggtatg ctcggttcca ttgatgctaa 900
ccgtggtgac taccaaaacg gttgggatac tgatcaattc ccaattgatc aatacgaact 960
cgtccaagct tggatggaaa tcatccgtgg tggtggtttc gttactggtg gtaccaactt 1020
cgatgccaag actcgtcgta actctactga cctcgaagac atcatcattg cccacgtttc 1080
tggtatggat gctatggctc gtgctcttga aaacgctgcc aagctcctcc aagaatctcc 1140
atacaccaag atgaagaagg aacgttacgc ttccttcgac agtggtattg gtaaggactt 1200
tgaagatggt aagctcaccc tcgaacaagt ttacgaatac ggtaagaaga acggtgaacc 1260
aaagcaaact tctggtaagc aagaactcta cgaagctatt gttgccatgt accaataagt 1320
taatcgtagt taaattggta aaataattgt aaaatcaata aacttgtcaa tcctccaatc 1380
aagtttaaaa gatcctatct ctgtactaat taaatatagt acaaaaaaaa atgtataaac 1440
aaaaaaaagt ctaaaagacg gaagaattta atttagggaa aaaataaaaa taataataaa 1500
caatagataa atcctttata ttaggaaaat gtcccattgt attattttca tttctactaa 1560
aaaagaaagt aaataaaaca caagaggaaa ttttcccttt tttttttttt tgtaataaat 1620
tttatgcaaa tataaatata aataaaataa taaaaaaaaa aaaaaaaaa 1669
<210> 16
<211> 395
<212> PRT
<213> Streptomyces lividans
<400> 16
Met Asn Tyr Gln Pro Thr Ser Glu Asp Arg Phe Thr Phe Gly Leu Trp
1 5 10 15
Thr Val Gly Trp Gln Gly Leu Asp Pro Phe Gly Asp Ala Thr Arg Glu
20 25 30
Ala Leu Asp Pro Ala Glu Ser Val Arg Arg Leu Ser Gln Leu Gly Ala
35 40 45
Tyr Gly Val Thr Phe His Asp Asp Glu Leu Ile Pro Phe Gly Ser Ser
50 55 60
Asp Asn Glu Arg Gly Val Ala His Gly Ala Gly Val Ala His Gln Ala
65 70 75 80
Val Pro Ala Gly Ala Gly Arg Asp Arg His Glu Gly Ala Asp Gly Asp
85 90 95
Asp Glu Pro Val His Ala Pro Gly Cys Ser Arg Asp Gly Ala Phe Thr
100 105 110
Ala Asn Asp Arg Asp Val Arg Gly Thr Arg Cys Ala Arg Ala Ile Arg
115 120 125
Asn Ile Asp Leu Ala Val Glu His Val Ala Arg Ala Ser Thr Cys Ala
130 135 140
Trp Gly Gly Arg Glu Gly Ala Glu Ser Gly Ala Ala Lys Asp Val Arg
145 150 155 160
Asp Ala Leu Asp Arg Met Lys Glu Ala Phe Asp Leu Leu Gly Glu Tyr
165 170 175
Val Thr Glu Gln Gly Tyr Asp Leu Lys Phe Ala Ile Glu Pro Lys Pro
180 185 190
Asn Glu Pro Arg Gly Asp Ile Leu Leu Pro Thr Val Gly His Ala Leu
195 200 205
Ala Phe Ile Glu Arg Leu Glu Arg Pro Glu Leu Tyr Gly Val Asn Pro
210 215 220
Glu Val Gly His Glu Gln Met Ala Gly Leu Asn Phe Pro His Gly Ile
225 230 235 240
Ala Gln Ala Leu Trp Ala Gly Lys Leu Phe His Ile Asp Leu Asn Gly
245 250 255
Gln Ser Gly Ile Lys Tyr Asp Gln Asp Leu Arg Phe Gly Ala Gly Asp
260 265 270
Leu Arg Ala Ala Phe Trp Leu Val Asp Leu Leu Glu Arg Ala Gly Tyr
275 280 285
Ala Gly Pro Arg His Phe Asp Phe Lys Pro Pro Arg Thr Glu Asn Phe
290 295 300
Asp Ala Val Trp Pro Ser Ala Ala Gly Cys Met Arg Asn Tyr Leu Ile
305 310 315 320
Leu Lys Asp Arg Ala Ala Ala Phe Arg Ala Asp Pro Gln Val Gln Glu
325 330 335
Ala Leu Ala Ala Ala Arg Leu Asp Glu Leu Ala Arg Pro Thr Ala Glu
340 345 350
Asp Gly Leu Ala Ala Leu Leu Ala Asp Arg Ser Ala Tyr Asp Thr Phe
355 360 365
Asp Val Asp Ala Ala Ala Ala Arg Gly Met Ala Phe Glu His Leu Asp
370 375 380
Gln Leu Ala Met Asp His Leu Leu Gly Ala Arg
385 390 395
<210> 17
<211> 2040
<212> DNA
<213> Piromyces sp.
<400> 17
attatataaa ataactttaa ataaaacaat ttttatttgt ttatttaatt attcaaaaaa 60
aattaaagta aaagaaaaat aatacagtag aacaatagta ataatatcaa aatgaagact 120
gttgctggta ttgatcttgg aactcaaagt atgaaagtcg ttatttacga ctatgaaaag 180
aaagaaatta ttgaaagtgc tagctgtcca atggaattga tttccgaaag tgacggtacc 240
cgtgaacaaa ccactgaatg gtttgacaag ggtcttgaag tttgttttgg taagcttagt 300
gctgataaca aaaagactat tgaagctatt ggtatttctg gtcaattaca cggttttgtt 360
cctcttgatg ctaacggtaa ggctttatac aacatcaaac tttggtgtga tactgctacc 420
gttgaagaat gtaagattat cactgatgct gccggtggtg acaaggctgt tattgatgcc 480
cttggtaacc ttatgctcac cggtttcacc gctccaaaga tcctctggct caagcgcaac 540
aagccagaag ctttcgctaa cttaaagtac attatgcttc cacacgatta cttaaactgg 600
aagcttactg gtgattacgt tatggaatac ggtgatgcct ctggtaccgc tctcttcgat 660
tctaagaacc gttgctggtc taagaagatt tgcgatatca ttgacccaaa acttttagat 720
ttacttccaa agttaattga accaagcgct ccagctggta aggttaatga tgaagccgct 780
aaggcttacg gtattccagc cggtattcca gtttccgctg gtggtggtga taacatgatg 840
ggtgctgttg gtactggtac tgttgctgat ggtttcctta ccatgtctat gggtacttct 900
ggtactcttt acggttacag tgacaagcca attagtgacc cagctaatgg tttaagtggt 960
ttctgttctt ctactggtgg atggcttcca ttactttgta ctatgaactg tactgttgcc 1020
actgaattcg ttcgtaacct cttccaaatg gatattaagg aacttaatgt tgaagctgcc 1080
aagtctccat gtggtagtga aggtgtttta gttattccat tcttcaatgg tgaaagaact 1140
ccaaacttac caaacggtcg tgctagtatt actggtctta cttctgctaa caccagccgt 1200
gctaacattg ctcgtgctag tttcgaatcc gccgttttcg ctatgcgtgg tggtttagat 1260
gctttccgta agttaggttt ccaaccaaag gaaattcgtc ttattggtgg tggttctaag 1320
ctgatctctg gagacaaatt gccgctgata tcatgaacct tccaatcaga gttccacttt 1380
tagaagaagc tgctgctctt ggtggtgctg ttcaagcttt atggtgtctt aagaaccaat 1440
ctggtaagtg tgatattgtt gaactttgca aagaacacat taagattgat gaatctaaga 1500
atgctaaccc aattgccgaa aatgttgctg tttacgacaa ggcttacgat gaatactgca 1560
aggttgtaaa tactctttct ccattatatg cttaaattgc caatgtaaaa aaaaatataa 1620
tgccatataa ttgccttgtc aatacactgt tcatgttcat ataatcatag gacattgaat 1680
ttacaaggtt tatacaatta atatctatta tcatattatt atacagcatt tcattttcta 1740
agattagacg aaacaattct tggttccttg caatatacaa aatttacatg aatttttaga 1800
atagtctcgt atttatgccc aataatcagg aaaattacct aatgctggat tcttgttaat 1860
aaaaacaaaa taaataaatt aaataaacaa ataaaaatta taagtaaata taaatatata 1920
agtaatataa aaaaaaagta aataaataaa taaataaata aaaatttttt gcaaatatat 1980
aaataaataa ataaaatata aaaataattt agcaaataaa ttaaaaaaaa aaaaaaaaaa 2040
<210> 18
<211> 1803
<212> DNA
<213> Saccharomyces sp.
<400> 18
atgttgtgtt cagtaattca gagacagaca agagaggttt ccaacacaat gtctttagac 60
tcatactatc ttgggtttga tctttcgacc caacaactga aatgtctcgc cattaaccag 120
gacctaaaaa ttgtccattc agaaacagtg gaatttgaaa aggatcttcc gcattatcac 180
acaaagaagg gtgtctatat acacggcgac actatcgaat gtcccgtagc catgtggtta 240
gaggctctag atctggttct ctcgaaatat cgcgaggcta aatttccatt gaacaaagtt 300
atggccgtct cagggtcctg ccagcagcac gggtctgtct actggtcctc ccaagccgaa 360
tctctgttag agcaattgaa taagaaaccg gaaaaagatt tattgcacta cgtgagctct 420
gtagcatttg caaggcaaac cgcccccaat tggcaagacc acagtactgc aaagcaatgt 480
caagagtttg aagagtgcat aggtgggcct gaaaaaatgg ctcaattaac agggtccaga 540
gcccatttta gatttactgg tcctcaaatt ctgaaaattg cacaattaga accagaagct 600
tacgaaaaaa caaagaccat ttctttagtg tctaattttt tgacttctat cttagtgggc 660
catcttgttg aattagagga ggcagatgcc tgtggtatga acctttatga tatacgtgaa 720
agaaaattca gtgatgagct actacatcta attgatagtt cttctaagga taaaactatc 780
agacaaaaat taatgagagc acccatgaaa aatttgatag cgggtaccat ctgtaaatat 840
tttattgaga agtacggttt caatacaaac tgcaaggtct ctcccatgac tggggataat 900
ttagccacta tatgttcttt acccctgcgg aagaatgacg ttctcgtttc cctaggaaca 960
agtactacag ttcttctggt caccgataag tatcacccct ctccgaacta tcatcttttc 1020
attcatccaa ctctgccaaa ccattatatg ggtatgattt gttattgtaa tggttctttg 1080
gcaagggaga ggataagaga cgagttaaac aaagaacggg aaaataatta tgagaagact 1140
aacgattgga ctctttttaa tcaagctgtg ctagatgact cagaaagtag tgaaaatgaa 1200
ttaggtgtat attttcctct gggggagatc gttcctagcg taaaagccat aaacaaaagg 1260
gttatcttca atccaaaaac gggtatgatt gaaagagagg tggccaagtt caaagacaag 1320
aggcacgatg ccaaaaatat tgtagaatca caggctttaa gttgcagggt aagaatatct 1380
cccctgcttt cggattcaaa cgcaagctca caacagagac tgaacgaaga tacaatcgtg 1440
aagtttgatt acgatgaatc tccgctgcgg gactacctaa ataaaaggcc agaaaggact 1500
ttttttgtag gtggggcttc taaaaacgat gctattgtga agaagtttgc tcaagtcatt 1560
ggtgctacaa agggtaattt taggctagaa acaccaaact catgtgccct tggtggttgt 1620
tataaggcca tgtggtcatt gttatatgac tctaataaaa ttgcagttcc ttttgataaa 1680
tttctgaatg acaattttcc atggcatgta atggaaagca tatccgatgt ggataatgaa 1740
aattgggatc gctataattc caagattgtc cccttaagcg aactggaaaa gactctcatc 1800
taa 1803
<210> 19
<211> 2942
<212> DNA
<213> Pichia sp.
<220>
<221> misc_feature
<222> (4)..(4)
<223> n is a, c, g, or t
<220>
<221> misc_feature
<222> (38)..(38)
<223> n is a, c, g, or t
<220>
<221> misc_feature
<222> (85)..(85)
<223> n is a, c, g, or t
<220>
<221> misc_feature
<222> (88)..(88)
<223> n is a, c, g, or t
<220>
<221> misc_feature
<222> (146)..(146)
<223> n is a, c, g, or t
<220>
<221> misc_feature
<222> (174)..(174)
<223> n is a, c, g, or t
<400> 19
ttanacagtt ttccagaatc caaattttcc aaccaacnaa aaacggaccc agaaagttac 60
agatttttca gagcttcatc ttttntanga tttcacagct tcatcaattt cagaccatag 120
ccataatgac ttttgtagag tttccnatca ctattcccaa ccagcagcgt gtgnaaactg 180
ccatcaccta tagtgcctac ttttcggttt tcaccagtgt ggtttttggc ctagttacaa 240
attcgctaga gaatgttgtg tatgcttttg gagcgcagac tgccatcacg ttagtgttga 300
ctgcattcaa ctggccgtgg ttcacgagtg ctcccggtat cgaatggctc ccggtagaat 360
tttaggatcg tatggtgact tggcgattta actgggtagc acaagggaat tttcaggaaa 420
ttttctggtt ggacattttg ggcggctgaa ctttcatggt taaaaggact aaggccagat 480
tctcgggggg agaaaaattt ctgttagttt ggaattttcc gagccccaca cattgcgatg 540
gtagattcgg tacgaaacta tataaacggt tggattccta gaaagggcca gatcagattg 600
tagstagtat atatagcata tagatccctg gaggataccc acagacatta ctgctactaa 660
ttcataccat acttgacgta tatctgcgca tacatatcta ccccaacttt catataaaat 720
tcctagattt attgcatctt ctaatagagt catttttcag atttttcaat ttccatagaa 780
agcatacatt ttcatacagc ttctatttgt taatcgacct gataatttta ctagccatat 840
ttcttttttt gatttttcac ttaatcgaca tataaatact cacgtagttg acactcacaa 900
tgaccactac cccatttgat gctccagata agctcttcct cgggttcgat ctttcgactc 960
agcagttgaa gatcatcgtc accgatgaaa acctcgctgc tctcaaaacc tacaatgtcg 1020
agttcgatag catcaacagc tctgtccaga agggtgtcat tgctatcaac gacgaaatca 1080
gcaagggtgc cattatttcc cccgtttaca tgtggttgga tgcccttgac catgtttttg 1140
aagacatgaa gaaggacgga ttccccttca acaaggttgt tggtatttcc ggttcttgtc 1200
aacagcacgg ttcggtatac tggtctagaa cggccgagaa ggtcttgtcc gaattggacg 1260
ctgaatcttc gttatcgagc cagatgagat ctgctttcac cttcaagcac gctccaaact 1320
ggcaggatca ctctaccggt aaagagcttg aagagttcga aagagtgatt ggtgctgatg 1380
ccttggctga tatctctggt tccagagccc attacagatt cacagggctc cagattagaa 1440
agttgtctac cagattcaag cccgaaaagt acaacagaac tgctcgtatc tctttagttt 1500
cgtcatttgt tgccagtgtg ttgcttggta gaatcacctc cattgaagaa gccgatgctt 1560
gtggaatgaa cttgtacgat atcgaaaagc gcgagttcaa cgaagagctc ttggccatcg 1620
ctgctggtgt ccaccctgag ttggatggtg tagaacaaga cggtgaaatt tacagagctg 1680
gtatcaatga gttgaagaga aagttgggtc ctgtcaaacc tataacatac gaaagcgaag 1740
gtgacattgc ctcttacttt gtcaccagat acggcttcaa ccccgactgt aaaatctact 1800
cgttcaccgg agacaatttg gccacgatta tctcgttgcc tttggctcca aatgatgctt 1860
tgatctcatt gggtacttct actacagttt taattatcac caagaactac gctccttctt 1920
ctcaatacca tttgtttaaa catccaacca tgcctgacca ctacatgggc atgatctgct 1980
actgtaacgg ttccttggcc agagaaaagg ttagagacga agtcaacgaa aagttcaatg 2040
tagaagacaa gaagtcgtgg gacaagttca atgaaatctt ggacaaatcc acagacttca 2100
acaacaagtt gggtatttac ttcccacttg gcgaaattgt ccctaatgcc gctgctcaga 2160
tcaagagatc ggtgttgaac agcaagaacg aaattgtaga cgttgagttg ggcgacaaga 2220
actggcaacc tgaagatgat gtttcttcaa ttgtagaatc acagactttg tcttgtagat 2280
tgagaactgg tccaatgttg agcaagagtg gagattcttc tgcttccagc tctgcctcac 2340
ctcaaccaga aggtgatggt acagatttgc acaaggtcta ccaagacttg gttaaaaagt 2400
ttggtgactt gttcactgat ggaaagaagc aaacctttga gtctttgacc gccagaccta 2460
accgttgtta ctacgtcggt ggtgcttcca acaacggcag cattatccsc aagatgggtt 2520
ccatcttggc tcccgtcaac ggaaactaca aggttgacat tcctaacgcc tgtgcattgg 2580
gtggtgctta caaggccagt tggagttacg agtgtgaagc caagaaggaa tggatcggat 2640
acgatcagta tatcaacaga ttgtttgaag taagtgacga gatgaatctg ttcgaagtca 2700
aggataaatg gctcgaatat gccaacgggg ttggaatgtt ggccaagatg gaaagtgaat 2760
tgaaacacta aaatccataa tagcttgtat agaggtatag aaaaagagaa cgttatagag 2820
taaagacaat gtagcatata tgtgcgaata tcacgataga cgttatacag aagattactt 2880
tcacatcatt ttgaaaatat cttgatatgt tcatatttca ttcgcctcta gcatttttca 2940
ga 2942
<210> 20
<211> 1455
<212> DNA
<213> E. coli
<400> 20
atgtatatcg ggatagatct tggcacctcg ggcgtaaaag ttattttgct caacgagcag 60
ggtgaggtgg ttgctgcgca aacggaaaag ctgaccgttt cgcgcccgca tccactctgg 120
tcggaacaag acccggaaca gtggtggcag gcaactgatc gcgcaatgaa agctctgggc 180
gatcagcatt ctctgcagga cgttaaagca ttgggtattg ccggccagat gcacggagca 240
accttgctgg atgctcagca acgggtgtta cgccctgcca ttttgtggaa cgacgggcgc 300
tgtgcgcaag agtgcacttt gctggaagcg cgagttccgc aatcgcgggt gattaccggc 360
aacctgatga tgcccggatt tactgcgcct aaattgctat gggttcagcg gcatgagccg 420
gagatattcc gtcaaatcga caaagtatta ttaccgaaag attacttgcg tctgcgtatg 480
acgggggagt ttgccagcga tatgtctgac gcagctggca ccatgtggct ggatgtcgca 540
aagcgtgact ggagtgacgt catgctgcag gcttgcgact tatctcgtga ccagatgccc 600
gcattatacg aaggcagcga aattactggt gctttgttac ctgaagttgc gaaagcgtgg 660
ggtatggcga cggtgccagt tgtcgcaggc ggtggcgaca atgcagctgg tgcagttggt 720
gtgggaatgg ttgatgctaa tcaggcaatg ttatcgctgg ggacgtcggg ggtctatttt 780
gctgtcagcg aagggttctt aagcaagcca gaaagcgccg tacatagctt ttgccatgcg 840
ctaccgcaac gttggcattt aatgtctgtg atgctgagtg cagcgtcgtg tctggattgg 900
gccgcgaaat taaccggcct gagcaatgtc ccagctttaa tcgctgcagc tcaacaggct 960
gatgaaagtg ccgagccagt ttggtttctg ccttatcttt ccggcgagcg tacgccacac 1020
aataatcccc aggcgaaggg ggttttcttt ggtttgactc atcaacatgg ccccaatgaa 1080
ctggcgcgag cagtgctgga aggcgtgggt tatgcgctgg cagatggcat ggatgtcgtg 1140
catgcctgcg gtattaaacc gcaaagtgtt acgttgattg ggggcggggc gcgtagtgag 1200
tactggcgtc agatgctggc ggatatcagc ggtcagcagc tcgattaccg tacggggggg 1260
gatgtggggc cagcactggg cgcagcaagg ctggcgcaga tcgcggcgaa tccagagaaa 1320
tcgctcattg aattgttgcc gcaactaccg ttagaacagt cgcatctacc agatgcgcag 1380
cgttatgccg cttatcagcc acgacgagaa acgttccgtc gcctctatca gcaacttctg 1440
ccattaatgg cgtaa 1455
<210> 21
<211> 1623
<212> DNA
<213> Aspergillus sp.
<400> 21
atggctatcg gcaatcttta cttcattgcg gccatcgccg tcgtcggcgg tggtctgttc 60
ggtttcgata tctcgtcgat gtcggccatc atcgagaccg atgcctatct ctgttacttc 120
aaccaggctc ctgtcactta cgatgatgat ggcaagaggg tctgtcaggg ccccagcgcg 180
agtgtgcagg gtggtatcac cgcctccatg gctggtggtt cctggttggg ctcgttgatc 240
tcgggtttca tctcggacag gcttggtcgt cgtactgcca ttcagatcgg ttccatcatc 300
tggtgcattg gatccatcat tgtctgtgcc tcccagaaca ttcccatgct gatcgtcggt 360
cgtatcatca acggtctgag tgtgggtatc tgctccgctc aggtgccagt gtatatttcg 420
gagattgctc ctccaaccaa gcgtggtcgt gtcgtcggtc tgcaacaatg ggctattacc 480
tggggtatcc tgatcatgtt ctacgtctcc tatggatgca gcttcatcaa gggtacggcg 540
gccttccgga ttccctgggg tctgcagatg atccctgccg tgctattgtt cctgggtatg 600
atgctcctgc ctgagtcacc ccgctggctg gcacgcaagg accgatggga ggagtgccac 660
gctgttttga ccctcgtcca cggtcaggga gacccgagct ctccctttgt gcagcgtgaa 720
tatgaagaga tcaagagcat gtgcgagttt gagcgccaaa acgcggatgt ctcctacctc 780
gagctgttca agcccaacat gcttaaccgt acccatgtgg gtgttttcgt tcagatctgg 840
tctcagttga ctggaatgaa cgtcatgatg tactacatca cctacgtctt tgccatggcc 900
ggcttgaaag gtaacaacaa cttgatctcc tccagtatcc agtacgtgat caacgtgtgc 960
atgactgtgc cggctctggt gtggggtgat cagtggggcc gtcgcccgac cttcttgatc 1020
ggttccctct tcatgatgat ctggatgtac attaatgctg gtctgatggc cagctacggt 1080
catcccgcgc cgcccggcgg tctcaacaac gtggaagccg agtcctgggt catccacggc 1140
gcgcccagca aggctgtcat tgccagtacc tacctcttcg tagcctcata cgccatctcc 1200
ttcggccccg ccagctgggt gtacccgccg gaactcttcc ctctgcgtgt gcgcggcaag 1260
gctaccgccc tctgcacttc agccaactgg gccttcaact tcgccctcag ctattttgtc 1320
cccccggcat ttgtcaacat ccagtggaag gtctacatcc tcttcggtgt cttctgtact 1380
gccatgttct tgcacatttt cttcttcttt cccgagacca cgggtaagac cctggaagag 1440
gtcgaggcca tcttcactga tcccaatggt attccgtaca tcggtactcc cgcctggaag 1500
acaaagaacg agtactcgcg cggtgcacac attgaggagg ttggctttga agatgagaag 1560
aaggttgctg gtgggcagac tatccaccag gaggtcacgg ctactccgga taagattgct 1620
tga 1623
<210> 22
<211> 1644
<212> DNA
<213> Candida sp.
<400> 22
atgtcacaag attcgcattc ttctggtgcc gctacaccag tcaatggttc catccttgaa 60
aaggaaaaag aagactctcc agttcttcaa gttgatgccc cacaaaaggg tttcaaggac 120
tacattgtca tttctatctt ctgttttatg gttgccttcg gtggtttcgt cttcggtttc 180
gacactggta ccatttccgg tttcgtgaac atgtctgact ttaaagacag attcggtcaa 240
caccacgctg atggtactcc ttacttgtcc gacgttagag ttggtttgat gatttctatt 300
ttcaacgttg gttgcgctgt cggtggtatt ttcctctgca aggtcgctga tgtctggggt 360
agaagaattg gtcttatgtt ctccatggct gtctacgttg ttggtattat tattcagatc 420
tcttcatcca ccaagtggta ccagttcttc attggtcgtc ttattgctgg tttggctgtt 480
ggtaccgttt ctgtcgtttc cccacttttc atctctgagg tttctccaaa gcaaattaga 540
ggtactttag tgtgctgctt ccagttgtgt atcaccttgg gtatcttctt gggttactgt 600
actacttacg gtactaagac ctacactgac tctagacagt ggagaattcc tttgggtttg 660
tgtttcgctt gggctatctt gttggttgtc ggtatgttga acatgccaga gtctccaaga 720
tacttggttg agaagcacag aattgatgag gccaagagat ccattgccag atccaacaag 780
atccctgagg aggacccatt cgtctacact gaggttcagc ttattcaggc cggtattgag 840
agagaagctt tggctggtca ggcatcttgg aaggagttga tcactggtaa gccaaagatc 900
ttcagaagag ttatcatggg tattatgctt cagtccttgc aacagttgac cggtgacaac 960
tacttcttct actacggtac taccattttc caggctgtcg gtttgaagga ttctttccag 1020
acttctatca ttttgggtat tgtcaacttt gcttccacct tcgttggtat ctatgtcatt 1080
gagagattgg gtagaagatt gtgtcttttg accggttccg ctgctatgtt catctgtttc 1140
atcatctact ctttgattgg tactcagcac ttgtacaagc aaggttactc caacgagacc 1200
tccaacactt acaaggcttc tggtaacgct atgatcttca tcacttgtct ttacattttc 1260
ttctttgctt ctacctgggc tggtggtgtt tactgtatca tttccgagtc ctacccattg 1320
agaattagat ccaaggccat gtctattgct accgctgcta actggttgtg gggtttcttg 1380
atttccttct tcactccatt catcaccagt gccatccact tctactacgg tttcgttttc 1440
actggttgtt tggctttctc tttcttctac gtctacttct tcgtctacga aaccaagggt 1500
ctttctttgg aggaggttga tgagatgtac gcttccggtg ttcttccact caagtctgcc 1560
agctgggttc caccaaatct tgagcacatg gctcactctg ccggttacgc tggtgctgac 1620
aaggccaccg acgaacaggt ttaa 1644
<210> 23
<211> 1569
<212> DNA
<213> Candida sp.
<400> 23
atgggtttgg aggacaatag aatggttaag cgtttcgtca acgttggcga gaagaaggct 60
ggctctactg ccatggccat catcgtcggt ctttttgctg cttctggtgg tgtccttttc 120
ggatacgata ctggtactat ttctggtgtg atgaccatgg actacgttct tgctcgttac 180
ccttccaaca agcactcttt tactgctgat gaatcttctt tgattgtttc tatcttgtct 240
gttggtactt tctttggtgc actttgtgct ccattcctta acgacaccct cggtagacgt 300
tggtgtctta ttctttctgc tcttattgtc ttcaacattg gtgctatctt gcaggtcatc 360
tctactgcca ttccattgct ttgtgctggt agagttattg caggttttgg tgtcggtttg 420
atttctgcta ctattccatt gtaccaatct gagactgctc caaagtggat cagaggtgcc 480
attgtctctt gttaccagtg ggctattacc attggtcttt tcttggcctc ttgtgtcaac 540
aagggtactg agcacatgac taactctgga tcttacagaa ttccacttgc tattcaatgt 600
ctttggggtc ttatcttggg tatcggtatg atcttcttgc cagagactcc aagattctgg 660
atctccaagg gtaaccagga gaaggctgct gagtctttgg ccagattgag aaagcttcca 720
attgaccacc cagactctct cgaggaatta agagacatca ctgctgctta cgagttcgag 780
actgtgtacg gtaagtcctc ttggagccag gtgttctctc acaagaacca ccagttgaag 840
agattgttca ctggtgtggc tatccaggct ttccagcaat tgaccggtgt taacttcatt 900
ttctactacg gtactacctt cttcaagaga gctggtgtta acggtttcac tatctccttg 960
gccactaaca ttgtcaatgt cggttctact attccaggta ttcttttgat ggaagtcctc 1020
ggtagaagaa acatgttgat gggtggtgct actggtatgt ctctttctca attgatcgtt 1080
gccattgttg gtgttgctac ctcggaaaac aacaagtctt cccagtccgt ccttgttgct 1140
ttctcctgta ttttcattgc cttcttcgct gccacctggg gtccatgtgc ttgggttgtt 1200
gttggtgagt tgttcccatt gagaaccaga gctaagtctg tctccttgtg tactgcttcc 1260
aactggttgt ggaactgggg tattgcttac gctactccat acatggtgga tgaagacaag 1320
ggtaacttgg gttccaatgt gttcttcatc tggggtggtt tcaacttggc ttgtgttttc 1380
ttcgcttggt acttcatcta cgagaccaag ggtctttctt tggagcaggt cgacgagttg 1440
tacgagcatg tcagcaaggc ttggaagtct aagggcttcg ttccatctaa gcactctttc 1500
agagagcagg tggaccagca aatggactcc aaaactgaag ctattatgtc tgaagaagct 1560
tctgtttaa 1569
<210> 24
<211> 1662
<212> DNA
<213> Pichia sp.
<400> 24
atgtctgtag atgaaaatca attggagaat ggacaacttc tatcctccga aaatgaggca 60
tcatcacctt ttaaagagtc tatcccttct cgctcttccc tctacttaat agctcttaca 120
gtttcacttt tgggagttca attgacttgg tcggttgaac ttggttatgg tacaccgtat 180
ttattctcac ttggtcttcg taaagaatgg acttcaatta tatggattgc cggtcctttg 240
actggaatat taattcagcc aattgctggt atattgtccg accgggttaa ttcaagaata 300
ggtcggcgga gaccgttcat gctctgtgct agtttgttag gaacattcag cttattcctt 360
atgggctggg cccctgatat ttgcctcttt atatttagca atgaggttct aatgaaacgt 420
gttactatcg ttttggctac gattagcatt tatttgcttg acgtggccgt caatgtcgta 480
atggctagca ctcgatcttt aattgttgat tcagtccgtt cagatcaaca gcatgaagca 540
aattcctggg ctggaagaat gataggtgta ggcaatgtgc ttgggtactt actaggctat 600
ttacctctat atcgcatctt ctcctttctc aatttcacac agttacaggt gttttgcgta 660
cttgcctcca tttccttggt actcacagtt accatcacaa caatatttgt gagtgaaagg 720
agattcccac cagttgaaca cgagaaatcg gttgctggag aaatctttga attttttaca 780
actatgcgac aaagtattac cgcacttcca tttacattaa aaagaatttg ttttgttcaa 840
ttttttgcat actttggatg gtttccattt ttgttttata ttactaccta tgtgggtatt 900
ttatatttac gccatgctcc taaaggccat gaagaagatt gggacatggc gactcgtcaa 960
gggtcgttcg cattactgct ttttgctatc atttctcttg ccgcaaatac agcacttcca 1020
ttgttgctcg aggacacgga ggatgatgag gaggacgaat cgagtgatgc atctaataat 1080
gaatacaaca ttcaagaaag aaacgatctc ggaaatataa gaactggtac taatacaccc 1140
cgtcttggta atttgagcga aacaacttct ttccgttcgg aaaatgagcc ctcacgacgc 1200
aggcttttac cgtctagtag atcaattatg acaacgatat cctccaaggt acaaatcaaa 1260
ggacttactc ttcctattct gtggttgagc tcccatgtcc tttttggtgt ttgtatgttg 1320
agcacgatat tcttgcaaac atcatggcaa gcgcaggcaa tggtagctat ctgtggactg 1380
tcctgggcat gtactctatg gattccatat tcgctatttt cttcagaaat agggaagctt 1440
ggattacgag aaagcagtgg caaaatgatt ggtgttcaca atgtatttat atctgccccc 1500
caagtgttga gcaccatcat tgccaccatt gtatttattc aatcggaggg cagtcatcga 1560
gacatcgccg acaatagtat agcatgggtg ttgagaattg gaggtatatc tgcatttcta 1620
gccgcgtacc aatgccggca tcttttgccc atcaactttt ga 1662
<210> 25
<211> 490
<212> DNA
<213> Thraustochytrium sp.
<400> 25
cgcggcttcc cgtctccaag cttcgtctcg gtagagattc tatcttcgcc cggcagcccg 60
ccgccgtccg gcaagtgtag aacggcagaa agcccacttg cacggaacgc ccgacaagtt 120
gacgaaagcg gcccgcaagt gcggcagccc ggctggtttt tcctcgcggc gaggccaaac 180
cgccaacgcc accaagccag acaccaggta tgtgccgcac gcgccgccgc acgcgagccc 240
cgaggatgcc ccgtacgcgc tgacgccttt ctccgccccg cccgcgagaa gacgcgctcc 300
ggcaacggcg ggagccgagc gaacgggcga ggattgatcg agtagctgca ggttgagaaa 360
aaaggaaaac cgccgagatg gacaacggct ggatggacga gaagacgcac gaggacgcga 420
ggactgacga tgatcacgtg cgcaggaaga cttgaaaaga agcaaggaag gtagaaaaaa 480
aagaagaaat 490
<210> 26
<211> 1004
<212> DNA
<213> Thraustochytrium sp.
<400> 26
ggcctgtctc ccttggccat ccattgcgct gcggaagcat tggattgcga actgcgtcgg 60
ccagatcgct tggtttccca acatgagacg cgctctgtcg gcaagaccat ttccgccccc 120
ggctttgctc acaaccaact cgtagtagat tttgtaaaga acactgcacg tctgactgct 180
cccagcccgc acgcattgcg cttggcagcc tcggtcccaa accgtcacgg tcgctgcccg 240
gtccacggga aaaaataact tttgtccgcg agcggccgtt caaggcgcag ccgcgagcgt 300
gccaaccgtc cgtcccgcat tcttttccca atgttggatt cattcattct tgccaggcca 360
gatcatctgt gcctccctcg cgtgcccttc cttagcgtgc gcagatctct tcttcccaga 420
gcccgcgcgg cgcttcgtgg agtcggcgtc catgtcatgc gcgcgcggcg tcttgacccc 480
ctcggcccct ttggttcgcg gctgcgcaac gagccgtttc acgccattgc gaccaaccgc 540
gcgctaaaat cggattggcc gttgcacgcc gattttgcag cacctctggg ctgtgaggga 600
cgaccgtcca cttttacccg cacagagtgg actttcaccc cctcactcca ctgaagccaa 660
cttttcgccg tcttcccaac ccaaagttta tgctagccct catgccgcaa cggacgtcac 720
ccccatttcc actggcgacg tggggacctg ggcgcaataa ggcgcgagaa ggaaattacg 780
acggcacact ggggccagaa gagggcacta ggagcggcaa cccactggcg cggcacagcg 840
gtttggcgcg gggatcaaag caaaacccgg ctcatccaga gcaaacccga atcagccttc 900
agacggtcgt gcctaacaac acgccgttct accccgcctt ccttgcgtcc ctcgcctccc 960
ccgagcccaa gtcttccgcc cgctcctaac gccaaccaag caag 1004
<210> 27
<211> 590
<212> DNA
<213> Thraustochytrium sp.
<400> 27
atgcattcgc atggctccgc accaccacac accaccgccc ctcttctttc cttgctcact 60
cgatccatag ccacttacct gccccttccc tctaccactg ccacgtgcgg cgtatgagcg 120
cgcttgcacc cgcaaccttc tctctagttg ttcacaatta cacccgctat caatactcac 180
gcattcatct tccccttttt ttctacttta cgtaccggtg ctcacttact tacacctgcc 240
cgccttgttc attcattctt ctcgatgaca acggcaggct ctgcttgcgg cgcgcgcacg 300
catcccttac tccgccgcgc accgacaagc ctgcgcaaaa aacaaaaaaa acttatcttc 360
gctcgcggct ccgatgtcgc ggcggcgtac gagaccgcgc cgagttccgc ccgccatgcg 420
atcgagagtc tctctcgtag gagcgggacc gcgagcgacc tcggtgcctc cgatagccag 480
ctgggcttct agaccggctg ggggaccgcc cgcggcgtac ctctgcgctt cggtggccct 540
taaaaggctg atcgtggaaa aggtcgctct ccagtctgcg gtttagcggc 590
<210> 28
<211> 640
<212> DNA
<213> Thraustochytrium sp.
<400> 28
gcgccttcag gcaggctgat ccctactgtg ggggctctga cggacggccg gtctttgtac 60
gtaaacaggc gcttcttcgc ggcccgccga ggggggcggc aacgagccgg gtggcgtggc 120
acggacaagg caagagcctt tccatcccgc ataaagtgat gcaccatttt gaccttgttg 180
atcgtttttg tgtgtttaga gcggccccgt gcgggtaggc gaagtgcgct tctgagcaag 240
gaagagagag gtgcagcttc ttcttgatca gtgtggtaat cttcaacggc cacgctcgct 300
tattcgatac ctgtaaagct accggtgcac ccgtgcaagt tgggcaccac gtagttgtac 360
tggtgaatcc aaatgttagc cgctagcttg gtgccctttt cgacaggaag ggcttggtga 420
aaagccatgc tgtcgatctc ccttgggtcc tcgttcgtga cgctaggcca gagaatagct 480
gtgtgccgcg cagtcgaagc cagcgcgcgc gcgtcggggc cgagcataga gttagcaatt 540
cagttgtttc gggctcttga tgaggccgcc agagagcgaa gaaggatgaa cttaccagat 600
ccgcgctccg gtgtattggt gatgggcggc ttggtctccg 640
<210> 29
<211> 372
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Synthetic Construct
<400> 29
atggccaagc tcacctcggc cgtcccggtg ctcaccgcgc gcgacgtcgc cggcgcggtc 60
gagttctgga ccgaccggct cgggttctcc cgggacttcg tggaggacga cttcgccggc 120
gtggtccggg acgacgtgac cctgttcatc agcgcggtcc aggaccaggt ggtgccggac 180
aacaccctgg cctgggtgtg ggtgcgcggc ctggacgagc tgtacgccga gtggtcggag 240
gtcgtgtcca cgaacttccg ggacgcctcc gggccggcca tgaccgagat cggcgagcag 300
ccgtgggggc gggagttcgc cctgcgcgac ccggccggca actgcgtgca cttcgtggcc 360
gaggagcagg ac 372
<210> 30
<211> 1017
<212> DNA
<213> Thraustochytrium sp.
<400> 30
gcgttgtttc ggcacgcgca attgccggga tgggaatgtg cattggtgca cgggattgct 60
gcgtcggccg ggccgtctcc caacatgaga cgcgctcggc aggaccgctt ccggttggca 120
taacgtcgtt ttttccctgc tgtcccagct cgcgctttcg agacgaagct atctgtacta 180
ccctctctac tcgcgatcac tcgctcgcaa ggaaaatgga agttaacgaa aggtcaatca 240
ttttttgcgc tctgcattca tttgctctct tcttgttgtt tgtggaacca aacggtcaga 300
cgcgtggatc gcttttgtta ggcactcggg aacggctgtc cctttaagca ctcaaccgaa 360
cagtcgggcc acttggtctg caacagcgag accaacttgg gtgcatggcg gcggctcatc 420
ttccactgcc actccatggg caggtcgtga aaggagagcc acagcgagta gcccgcctgc 480
tggcggctct gtccgcacga ctggcacaca gacgtcccgg cgtcgttctg gccaaagcac 540
atggtctgga agcgggtccg gtaacaagag gcgcaacgcc aaggctcgct cgaggccggc 600
tcgttgtccg cgttgagcgt caaaatcacg gggggcggca cgcccgcagg gcgctcgggc 660
cccgtgatcg acggatcgtc gatagcgagc acgacctcgt aacgccaggc gcgaaaatcg 720
ttgggcttgg cagccttgtc gtcaggatgc gcctgcacaa tgtcctcgac ctcgccaggc 780
actggtttga agtacgcctc cttgtgctcc tccggggccg cctctgcctc cttgtcgccg 840
tggatctcga gttgggccat gcggggaccg gccggcggca gaccgttaaa atgccagagg 900
tgcagcggtg gcttgtacga gtcgagggcg tggtcgcaga agagtagcgt aaaatggtca 960
ccgccgtgca ggatccatac agggtgcccc ggcgtcttga ggcagtcgtg tacagga 1017
Claims (66)
- 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체를 포함하는 재조합 미생물로서, 상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산이 외인성 핵산인, 재조합 미생물.
- 제1항에 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 서열을 추가로 포함하는 재조합 미생물. - 제2항에 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열이 외인성 핵산 서열인, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 서열을 추가로 포함하는 재조합 미생물. - 제4항에 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열이 외인성 핵산 서열인, 재조합 미생물. - 제1항에 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체, 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 하나 이상의 핵산 서열을 추가로 포함하는 재조합 미생물. - 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열이 이종성 핵산인, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제7항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함하는 재조합 미생물. - 제1항 내지 제8항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 이종성 핵산 서열이 서열번호 2와 90% 이상 동일한, 재조합 미생물. - 제2항 내지 제9항 중 어느 한 항 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함하는 재조합 미생물. - 제4항 내지 제10항 중 어느 한 항 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열이 이종성 핵산인, 재조합 미생물. - 제11항에 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 이종성 핵산 서열이 서열번호 5와 90% 이상 동일한, 재조합 미생물. - 제5항 내지 제12항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함하는 재조합 미생물. - 제5항 내지 제13항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산이 이종성 핵산인, 재조합 미생물. - 제14항에 있어서,
이종성 핵산에 의해 인코딩되는 크실로오스 전달체가 칸디다 인테르메디아(Candida intermedia)의 GXS1인, 재조합 미생물. - 제14항에 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 이종성 핵산 서열이 서열번호 23과 90% 이상 동일한, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제16항 중 어느 한 항 있어서,
비-재조합 대조 미생물과 비교하여 증가된 크실로오스 운반 활성, 비-재조합 대조 미생물과 비교하여 증가된 크실로오스 이성화효소 활성, 비-재조합 대조 미생물과 비교하여 증가된 크실룰로오스 키나제 활성, 또는 이들의 조합을 갖는, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제17항 중 어느 한 항 있어서,
유일한 탄소원인 크실로오스와 함께 성장하는 재조합 미생물. - 제1항 내지 제18항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열이 프로모터에 작동가능하게 연계되는, 재조합 미생물. - 제11항 내지 제19항 중 어느 한 항 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열이 프로모터에 작동가능하게 연계되는, 재조합 미생물. - 제14항 내지 제20항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열이 프로모터에 작동가능하게 연계되는, 재조합 미생물. - 제19항 내지 제21항 중 어느 한 항 있어서,
프로모터가 튜블린 프로모터인, 재조합 미생물. - 제22항에 있어서,
프로모터가 서열번호 25 또는 서열번호 26과 80% 이상 동일한, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제23항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열이 터미네이터를 포함하는, 재조합 미생물. - 제11항 내지 제24항 중 어느 한 항 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열이 터미네이터를 포함하는, 재조합 미생물. - 제14항 내지 제25항 중 어느 한 항 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열이 터미네이터를 포함하는, 재조합 미생물. - 제24항 내지 제26항 중 어느 한 항 있어서,
터미네이터가 튜블린 터미네이터인, 재조합 미생물. - 제27항에 있어서,
터미네이터가 서열번호 27, 서열번호 28 또는 서열번호 30과 80% 이상 동일한, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제28항 중 어느 한 항 있어서,
선택가능한 표지를 추가로 포함하는 재조합 미생물. - 제29항에 있어서
선택가능한 표지가 항생제 내성 유전자인, 재조합 미생물. - 제30항에 있어서
항생제가 제오신, 히그로마이신 B, 카나마이신 또는 네오마이신인, 재조합 미생물. - 제1항 내지 제31항 중 어느 한 항 있어서,
트라우스토키트리움(T hraustochytrium) 또는 쉬조키트리움(Schizochytrium) 미생물인 재조합 미생물. - 제32항에 있어서,
ONC-T18인 재조합 미생물. - 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 하나 이상의 핵산 구조체를 제공하는 단계;
크실로오스-대사 미생물을 상기 하나 이상의 핵산 구조체로 형질전환시키는 단계; 및
상기 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열의 2개 이상의 복사체를 포함하는 미생물을 단리하는 단계
를 포함하는, 크실로오스-대사 재조합 미생물의 생산 방법. - 제34항에 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 하나 이상의 복사체를 포함하는 미생물을 단리하는 단계를 추가로 포함하는, 생산 방법. - 제35항에 있어서,
크실로오스 전달체의 하나 이상의 복사체를 포함하는 미생물을 단리하는 생산 방법. - 제34항 내지 제36항 중 어느 한 항 있어서,
하나 이상의 핵산 구조체가 선택가능한 표지를 추가로 포함하는, 생산 방법. - 제34항 내지 제37항 중 어느 한 항 있어서,
제공하는 단계가 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 제1 핵산 구조체, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 제2 핵산 구조체, 및 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열을 포함하는 제3 핵산 구조체를 제공함을 포함하는, 생산 방법. - 제38항에 있어서,
제1, 제2 및 제3 핵산 구조체가 동일한 선택가능한 표지를 포함하는, 생산 방법. - 제38항 또는 제39항에 있어서,
제1 핵산 구조체가 프로모터, 선택가능한 표지, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열, 및 터미네이터를 포함하는, 생산 방법. - 제38항 내지 제40항 중 어느 한 항에 있어서,
제2 핵산 구조체가 프로모터, 선택가능한 표지, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열, 및 터미네이터를 포함하는, 생산 방법. - 제38항 내지 제41항 중 어느 한 항에 있어서,
제3 핵산 구조체가 프로모터, 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열, 2A 펩티드를 인코딩하는 핵산 서열, 선택가능한 표지, 및 터미네이터를 포함하는, 생산 방법. - 제37항 내지 제42항 중 어느 한 항에 있어서,
선택가능한 표지가 항생제 내성 유전자인, 생산 방법. - 제43항에 있어서,
항생제가 제오신, 히그로마이신 B, 카나마이신 또는 네오마이신인, 생산 방법. - 제40항 내지 제44항 중 어느 한 항에 있어서,
프로모터가 튜블린 프로모터인, 생산 방법. - 제45항에 있어서,
프로모터가 서열번호 25 또는 서열번호 26과 80% 이상 동일한, 생산 방법. - 제40항 내지 제46항 중 어느 한 항에 있어서,
터미네이터가 튜블린 터미네이터인, 생산 방법. - 제47항에 있어서,
터미네이터가 서열번호 27, 서열번호 28 또는 서열번호 30과 80% 이상 동일한, 생산 방법. - 제34항 내지 제48항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 외인성 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함하는, 생산 방법. - 제34항 내지 제49항 중 어느 한 항에 있어서,
크실로오스 이성화효소가 이종성 크실로오스 이성화효소인, 생산 방법. - 제34항 내지 제49항 중 어느 한 항에 있어서,
크실로오스 이성화효소를 인코딩하는 핵산 서열이 서열번호 2와 90% 이상 동일한, 생산 방법. - 제34항 내지 제51항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함하는, 생산 방법. - 제34항 내지 제52항 중 어느 한 항에 있어서,
크실룰로오스 키나제가 이종성 크실룰로오스 키나제인, 생산 방법. - 제34항 내지 제52항 중 어느 한 항에 있어서,
크실룰로오스 키나제를 인코딩하는 핵산 서열이 서열번호 5와 90% 이상 동일한, 생산 방법. - 제34항 내지 제54항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열의 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 또는 40개 이상의 복사체를 포함하는, 생산 방법. - 제34항 내지 제55항 중 어느 한 항에 있어서,
크실로오스 전달체가 이종성 크실로오스 전달체인, 생산 방법. - 제34항 내지 제56항 중 어느 한 항에 있어서,
크실로오스 전달체가 칸디다 인테르메디아의 GXS1인, 생산 방법. - 제34항 내지 제56항 중 어느 한 항에 있어서,
크실로오스 전달체를 인코딩하는 핵산 서열이 서열번호 23과 90% 이상 동일한, 생산 방법. - 제34항 내지 제58항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 비-재조합 대조 미생물과 비교하여 증가된 크실로오스 운반 활성, 비-재조합 대조 미생물과 비교하여 증가된 크실로오스 이성화효소 활성, 비-재조합 대조 미생물과 비교하여 증가된 크실룰로오스 키나제 활성, 또는 이들의 조합을 갖는, 생산 방법. - 제34항 내지 제59항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 유일한 탄소원인 크실로오스와 함께 성장하는, 생산 방법. - 제34항 내지 제60항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 트라우스토키트리움 또는 쉬조키트리움 미생물인, 생산 방법. - 제34항 내지 제60항 중 어느 한 항에 있어서,
단리된 재조합 미생물이 ONC-T18인, 생산 방법. - 제1항 내지 제33항 중 어느 한 항에 따른 재조합 미생물을 제공하는 단계로서, 상기 재조합 미생물이 유일한 탄소원인 크실로오스 상에서 성장하는 단계; 및
상기 재조합 미생물을 적절한 조건하에서 배양 배지에서 배양하여 오일을 생산하는 단계
를 포함하는, 오일의 생산 방법. - 제63항에 있어서,
오일이 트리글리세리드를 포함하는, 생산 방법. - 제63항에 있어서,
오일이 알파 리놀렌산, 아라키돈산, 도코사헥사엔산, 도코사펜타엔산, 에이코사펜타엔산, 감마-리놀렌산, 리놀레산, 리놀렌산 또는 이들의 조합을 포함하는, 생산 방법. - 제63항에 있어서,
오일을 단리하는 단계를 추가로 포함하는 생산 방법.
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