JPH02289596A - 核酸の単離方法 - Google Patents
核酸の単離方法Info
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
ストキットに係る.より特定的には、本発明は全血、血
清、パフィーコート《血液の炎症性痴皮又は白血球フラ
クション)、尿、糞便、脳脊髄液、精液、唾液、組織、
細胞培養物等のような、核酸を含有する生物材料から核
酸を単離するための方法及びキットに係る.上記生物材
料から単離された核酸は、サンプルを採取した生物に内
在する核酸及び外来性(ウイルス、真菌、細菌又は寄生
虫に由来する)核酸も含有し得る。
酸(N^)を単離する既知の方法は通常、タンパク質分
解酵素の存在下で生物材料を洗剤により溶解させた後、
有機溶剤(例えばフェノール及び/又はクロロホルム)
で数回抽出し、エタノール沈降させ、核酸を透析するこ
とにより実施される.例えば臨床材゛料から(二重鎖)
DNAを単離するこれらの既知の方法は多大な労力と時
間を必要とする.このような出発材科からN^を精製す
るためには比較的多数の段階が必要とされるので、数個
の臨床サンプルを同時に処理する場合、サンプル間にN
^が伝播される危険が大きい.核酸増幅法、例えば最も
感受性の高いポリメラーゼ鎖反応(PCB ,Saik
i他、Science 230. 1985. 135
0)により例えば病原体(例えばウイルス又は細菌)に
おけるN^の存在を後で検出するためにN^を単離する
場合、このように異なるサンプル間でN^が伝播される
危険が大きいと、誤って陽性の結果が生じ、重大な問題
である. 汚染に対して感受性のこのような既知の方法の1例は、
組織及び細胞培養物から全RNAを単離するための方法
として^nalytical Bioches+ist
ry 1B2,1987. 156に記載されている方
法である.この方法によると、生物出発材料からRNA
を酸性チオシアン酸グアニジニウムーフェノールークロ
ロホルム混合物で1回抽出する,相分離後、更に水相を
処理することにより有用な条件下で4時間以内にRNA
を回収することができる. ^nalytical Biochemistry 1
62, 1987. 463には、塩酸グアニジンを含
有する緩衝液に細胞を分散し、エタノール沈降させるこ
とにより、組織及び細胞系から[lN^を単離するため
の方法が記載されている.この方法は汚染に対して感受
性であるが、分離したDNAを更に処理してから数時間
以内に有用なN^産物を単離することができる. しかしながら、これらの既知の方法は複雑な出発材料(
例えば全血及び血清)中では首尾よく使用することがで
きない。
法を提供することである. より特定的には本発明の目的は、種々の生物材料のよう
な複雑な出発材料から核酸(即ちDN^及び/又はRN
A)を未曾有の迅速さで簡単且つ再現可能に、しかもそ
の後、分子生物反応における反応剤として使用可能な非
損傷状態及び高純度で直接(前処理を介さずに)単離す
ることが可能な方法を提供することである。
染の危険が低いという点で既知の方法と異なり、即ち異
なるサンプル間におけるN^の伝播の危険を最小にしな
がら数個の臨床サンプルを同時に処理することが可能な
方法、並びに被処理サンプル中に存在し得るウイルス又
は細菌が人体に伝染する危険を最小にすることが可能な
手段を提供することである. これらの目的は本発明に従い、出発材料をカオトロピッ
ク物質及び核酸結合性固相と混合し、核酸が結合した固
相を液体から分離し、その後、こうして得られた固相一
核酸複合体を洗浄し、必要に応じて核酸を該複合体から
溶離することを特徴とする、核酸を含有する出発材料か
ら核酸を単離するための方法により実現される. 広義には本発明はあらゆる核酸含有出発材料《ウイルス
又は細菌に感染した食品及び類似製品、ワクチン及びミ
ルクを含む》に適用できるが、使用される出発材料が全
血、血清、パフィーコート、尿、糞便、脳脊髄液、精液
、唾液、組織及び細胞培養物(例えば噛乳動物細胞培養
物及び細菌培養物)のような核酸含有生物材料であるよ
うな方法に特に適用される.当然のことながら、本発明
の方法はPCR産物又は更に精製を要する別の核酸回収
方法の産物のような比較的純粋な出発材料にも適用でき
る.しかしながら、核酸含有生物材料の種類によっては
(例えば植物材料、ある種のダラム陽性菌並びにある種
の酵母及びカビ)は特殊な細胞壁構造によりカオトロピ
ック物質に溶解しないため、出発材料として本発明の方
法で直接使用することはできない.従って、このような
出発材料は入手形態の細胞に前処理を施す必要があり、
例えば予め細胞を溶解させてから得られた溶解物に本発
明の方法を実施すればよい. 核酸(N^)なる用話は、任意の可能な構造、即ち二重
鎖(ds)核酸、又は一重M (88)核酸、又はその
組み合わせ(部分的ds又はss)としてのDNA及び
RNAを意味する. 本発明の主眼は、カオトロピック物質の存在下でN^と
結合することが可能な核酸結合性固相、例えばシリカ粒
子を使用する点にある.シリカなる用語は、Sin2結
晶及び他の形態の酸化ケイ素、SiOzから構成される
ケイソウ植物の骨格、無定形酸化ケイ素並びにガラス粉
末を意味する.アルキルシリカ、ケイ酸アルミニウム(
ゼオライト》、−NH2を有する活性シリカ、ラテック
ス粒子、キュベットもしくは微量滴定プレートの内壁を
形成するある種のポリマー材料、又は例えばニトロセル
ロースから構成されるフィルター材料も本発明の核酸結
合性固相として使用できる. シリカ粒子の使用に関しては、カオトロピック塩Mal
(ヨウ化ナトリウム》の高濃度溶液中のdsDN^をア
ガロースから遊離させ、ガラスに結合できることがPN
AS 76, 1979. 615により知見された.
この文献はアガロースゲルからDNAを単離するための
2種の方法について記載しており、そのいずれも第1段
階でアガロースを溶解するためにMal溶液を使用して
いる.一方の方法では第2段階でDNAをアセトンで沈
降させ、他方の方法では第2段階でDNAをガラス粒子
に結合し、その後、水性yim液に溶離する.しかしな
がら、この方法では体液及び他の生物出発材料のような
複雑な出発材料を使用できない。更にこの論文は、本発
明の1段階方法については開示していない. 本発明によると、結合し、その後、溶離される高純度の
核酸を不純な出発材料から直接得られるように、適当に
選択した粒径を有するシリカ粒子を使用することが好ま
しい。
範囲の粒径を有するシリカ粒子を使用することを特徴と
する.r実質的に」なる用語は、シリカ粒子の80%以
上、好ましくは90%が規定された粒径範囲に該当する
ことを意味する.結合したN^を容易に処理できるよう
にするためには、使用されるシリカ粒子は実質的に0、
1〜200μ躊の範囲の粒径を有すると好適であり、使
用されるシリカ粒子が実質的に1〜200p+の範囲の
粒径を有するような方法が最適である。実際に、シリカ
粒子のN^結合能は粒子が小さければ小さいほど高いが
、特にN^含有量の高い出発材料の場合、及びN^分子
が比較的長い場合は、過度に小さいシリカ粒子を使用す
ると、形成されるN^−シリカ複合体をそれ以上有効に
再分散することができなくなる。換言するならば、結合
したN^を純粋な形で複合体から回収することができな
い.人血を出発材料として使用する場合、0。2〜IO
Hの範囲の粒径を有する非分画シリカを使用すると、こ
のような問題が生じることがある。
径が1〜10pmの範囲の分画したシリカを使用するこ
とにより避けることができる。しかしながら、細菌培養
物のように細胞中の濃度が高い出発材料を使用する場合
、このような粗いシリカフラクションの使用は再分散し
難い凝集物の形成を避けるためには不十分であり、2〜
zoou−の粒径を有するケイソウ土のようなもっと粗
いシリカを使用すると、最適の結果が得られることが判
明した。
態であるか、又はサンプルとカオトロピック物質とを収
容する容器の一部を形成する.N^結合性固相を後者の
形態に選択すると、その後のサンプル処理及びN^単離
のために遠心分離又はP過を実施する必要がなくなる. 本発明によると、シリカ粒子のような上記核酸結合性固
相以外にカオトロピック物質を使用することが不可欠で
ある.カオトロピック物質なる用語は、タンパク質及び
核酸の二次、三次及び/又は四次構造を変えることが可
能であり且つ少なくとも一次構造を無傷にしておくこと
が可能な任意の物質を意味する.具体例は(イソ)チオ
シアン酸グアニジニウム疎−び塩酸グアニジンである.
核酸を含有する出発材料からN^を単離するために、ヨ
ウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、(イソ)チオシアン
酸ナトリウム、尿素又はその相互の組み合わせも核酸結
合性固相と組み合わせて使用すると非常に好適である.
本発明によると、使用される力オト口ピックグアニジニ
ウム塩は好ましくはチオシアン酸グアニジニウム(Gu
SCN)である.本発明は通常、出発材料を十分大きい
量のカオトロピック物質(例えばグアニジニウム塩)及
び例えばシリカ粒子と混合し、出発材料中に存在する核
酸のほぼ全体を遊離させ、該シリカ粒子に結合させるよ
うに実施される.適当なプロトコールによると、例えば
、反応容器中に存在するGuSCN緩衝溶液にシリカ粒
子懸濁液を加え、その後、サンプルを加えて十分に混合
する.やがて、細胞が溶解し、ウイルスが存在する場合
はウイルスも溶解し、遊離したN^がほとんど即座にシ
リカ粒子に結合する.次に、形成されたシリカー核酸複
合体を例えば迅速沈澱(遠心分離)及び上清の廃棄(例
えば吸引による)により液体から分離し、その後、複合
体(例えばシリカー核酸ペレットの形態)を例えばボル
テックスミキサーを使用してカオトロピックグアニジニ
ウム塩を含有する洗浄用M@液で洗浄(再分散又は均質
化)し、再び沈澱させる。好ましくは、洗浄用榎衝液で
洗ったシリカー核酸複合体を更にアルコール水溶液(収
率の損失を制限するために最適には約70%エタノール
)及びアセトンで洗い、そのj表、(例えば加熱下に)
乾燥してアセトンを除去する。次に、洗浄及び乾燥した
シリカー核酸複合体中に存在するN^を水性溶離用!!
街液(elution buffer)により溶離する
.溶離用}JH!!液の選択は単敲されるN^の使用目
的に応じて決定される。適当な溶離用緩衝液の例はTI
E榎街液、2回蒸留水(aqua bidest)及び
PCRMi液([材料及び方法Jの項参照》である.好
ましくは、これらの全段階を単一の反応容器(例えば容
量1 .5z1のポリプロピレン製エツペンドルフチュ
ーブ)中で実施し、比較的少量、例えば100111未
満の精製N^を回収する。こうして単離したN^は核酸
分解酵素を含有せず、DNAポリメラーゼ(例えばb且
−ON^ボリメラーゼ)、DN^制限酵素、DNAリガ
ーゼ及び逆転写酵素(例えば^MY逆転写酵素)のよう
な種々の酵素の基質として直接使用できるような高純度
を有する。
EPO329822号に記載されている所謂NASBA
法(NASB^=核酸配列に基づく増幅)のような増幅
方法によりN^配列を証明できる程に、例えば血漿及び
血球を予め分離することなく約45分間に50,(の全
血から十分な量のN^を単離することができる。
る他の種々の生物材料にも適用することができる.この
ため、本発明は細菌及びウィルス感染の診断において、
並びに出生前診断及び遺伝性腫瘍体買の診断の領域にお
ける遺伝的多形性の研究において有用である。
実施することができ、方法の第1段階で粗出発材料から
遊離したN^が完全な別の精製過程の間に少なくとも固
相の大部分に結合するので、汚染の危険が非常に低い。
理に伴う人体への危険は、サンプルを反応容器に入れる
単M過程の第1段階にほぼ限定される6この第1の処理
において、潜在的に存在する病原体は有効に不活化され
る9本発明の方法は特殊な周辺技術(ボルテックスミキ
サー、12000fIエッペンドルフ型の遠心分離機及
び水浴又はエッペンドルフ加熱ブロックが標準実験技術
に属する)も生化学の専門的知識も必要としないので、
多数のサンプルがら機械的にN^を単離するため、換言
するなら自動化に非常に適している。本発明の方法を使
用すると、10個以上、あるいは24個以上の異なるサ
ンプルを約1時間で処理することができる。
めの方法のみならず、そのための手段の組み合わせ及び
該方法により得られた核酸を増幅するためのテストキッ
トにも係る. 1R様によると、本発明の手段の組み合わせは、(a)
(イソ》チオシアン酸グアニジニウムを含有する溶解用
MWR液(Jysis butler)、(b)実H的
に0.05 〜500um、好ましくは0.1 〜20
01m、最適には1〜200I1+*の範囲の粒径を有
するシリカ粒子の水性懸濁液、(C)(イソ)チオシア
ン酸グアニジニウムを含有する洗浄用#II.WI液、
及び必要に応じて(d)溶離用緩衝液を含む. 即ち、本発明の手段の組み合わせは例えば次の4成分、
即ち 成分l:(イソ)チオシアン酸グアニジニウム緩衝溶液
、 成分2:シリカ粒子の懸濁液、 成分3:洗浄用M街液、及び(場合によって)成分4:
溶離用緩衝液 から構成され得る. 必要に応じて成分l及び2を一緒にしてもよいが、その
場合、貯蔵寿命が制限される. 本発明のN^単離方法で使用することが好ましい他の反
応剤、例えばエタノール及びアセトンは標準実験技術に
属する。
p +nの、Sigma製の二酸化ケイ素(SiO■)
を使用した。
蒸留水〈最高500mf)中に懸濁させると、水柱の高
さは27.5cmとなった。室温で25時間lx g沈
降させた後に、70糟1を残して上澄みを吸引して除去
した。2回蒸留水を500mt’になるまで加え、シリ
ンダーをfi盪することにより粒子を再度懸濁させた。
を吸引して除去した。32%(賀/v)IIC1600
μlを加えた後、渦形成することにより再度懸濁させた
。この懸濁液を6ml容器に入れて4tnlアリコート
をつくり、密封し、オートクレープ内で121゜Cで2
0分間加熱した.この沈降プロトコルによって、粒径1
p輪以上のより大きなシリカ粒子を豊富に得ることがで
きた。これは電子■微鏡検査によって立証された,更に
、酸性(pH約2)のシリカをオートクレープ処理する
と、任意に存在する核酸が完全に分解される結果となる
。このように得られたシリカ粗材の懸濁液を以下SCと
表記する。
チルアクリルアミド二酸化ケイ素を用いてシリカを誘導
体化した。誘導体化したシリカの粒径は63〜Zoo,
Mであった。使用した粒子の孔径は500人であった。
osynth,Ossから供給された。
力粒子0.52を2回蒸留水1ml2中に懸濁させた。
0plを用いて90℃で30分間予備処理した。
リスチレンラテックスVQ69レッドはナトリゥムード
デシルスクシネートスルフェート基を吸収させてあり、
粒径は424nnを有した。ボリスチレンラテックスV
Q5813はより小さい粒径(328nm)を有し、外
側にスルフェ−I一基を吸収していなかった。
ラテックス粒子を使用した。^(1:F27c:、AC
N3レッド及び^GY1515の粒径はそれぞれ933
nm、206nm及び8 4 6 n mであった。上
記全てのボリスチレン粒子は^RL^−^rnhemよ
り供給のものであった。
+obilon TransferMembrane(
疎水性)、 2. Schleicher and Schuell
提供のNitrocel1ulose(0.2IIM参
照番号401 .396)、3. Hybond−N
八mersham提供のNyLon l{ybiri
dizationJli (0.45ミクロン、ロット
:16872)。
留水8 0 0 to rl中に溶解し、37%h/v
)IIc/ 8.1m/を加え、さらに容績1リットル
になるまで2回蒸留水を加えることにより、L2}5街
液(0.IM Tris.C1、pll6.4)を調製
した。
Bzo.,をL2M 街液100ml中に溶解すること
により、洗浄液L2を調製した。
L 2 [衝液25ml中に溶解することにより洗浄液
L2本を調製した。
、Mal(Merck製のヨウ化ナトリウム)11.2
51?をL2緩衝液25社中に溶解した。チオシアン酸
ナトリウムベースのカオトロピック物質を調製するため
に、NaSCN(Baker)6.1gをL2緩衝液2
5社中に溶解した。
調製するために、Kl 12.45,及び尿素12.0
gをL2緩衝液(25g+1)中に溶解した。同様に、
尿素及びNalを併有するカオトロピック物質と、尿素
及びNaSCNを併有するカオトロピック物質とを調製
した. D)l東肚111長 GuSCN 120gをL2緩衝液100n+1中に(
約60℃の温水浴中で静かに振盪させて)溶解し、次い
で40%(w/v)デキストランスルフェート(Pha
rmacia LKB)溶液26.0g、0.2M E
DTA pH8 22m/及びTriton X−10
0(Packard)2.6gを加え、次に溶液を均質
化することにより、溶解用緩衝液L5を調製した。0.
2MEDTA pH8溶液は、EDT^3フ.21F(
Merck製のTitriplex)37.2,及びN
aOH(Merck)4.4gを水500n+N中に溶
解することにより調製した。
60℃の水浴中で静かに振盪させて)溶解し、次いで0
.2M EDT^p It 8 2 2 m l及びT
riton X−100(Packard)2.81F
を加え、次に溶液を均質化することにより、溶解用wt
街液L6を調製した。
21Jj街125mN’中に(40゜Cの水浴中で静か
に振盪させて)溶解し、次いで0.2M EDTA(p
}18.0)5.5mN及びTriton X−100
(Boehringer 789704)0.65yを
加え、最後にこの溶液を均質化することにより、溶解用
緩FIT液L6車を調製した。同じ方法を適用してNa
p(ヨウ化ナトリウム、Merck)を含む溶解用緩衝
液L6本、及びNaSCN(チオシアン酸ナトリウム、
Ilaker)を含む溶解用緩衝液L6*を調製した。
ヨウ化カリウム、Merck)12.45#及び尿素(
Gibco BRL)12.0gをL2緩衝液25社中
に溶解することにより調製した.次いで、0.2M E
DT八(pH8.0)5.5n+1及びTriton
X−100(Boehringer)0.65gを加え
、この混合物を均質化した。同じ方法を使用してMal
/尿素及びNaSCN/尿素を調製した。
EDT八pH8 LOOmN中に溶解した溶液を意味
する。
ばRNAsin(Promega)0.5U/pffi
を含有する、pl+7.5の10mH Tris.C1
、1lM EDT^溶液(TE[衝液)である。
スビーズもしくはSCのごときシリカ、または珪藻土)
40v1をEppendorf f遠心分離管(タイプ
3810、1.5ml)に加えることにより、抽出過程
と同じ日に試験管を準備した。
で渦形成し、12000x gで15秒間遠心分離し、
更に吸引によって上澄みを廃棄することにより、ベレッ
トを洗浄した。
0.1の溶出用MW液を加え、短時間(2秒間)渦形成
し、56℃で10分間インキュベ−1・することにより
実施した. K)プロトコルB このプロトコルは、ヒト血清、全血、水様便または尿と
いった複合出発材料からdsDN^を単離するのに適し
ており、GEDTA soou1及びSC 40.1を
含むEppendorff試験管を使用した。
11を加え、直ぐに渦形成して(5〜10秒間)均質化
し、 3,室温に10分間放置し、5秒間渦形成し、4. 1
2000x gで15秒間遠心分離し、吸引によって上
澄みを廃棄し、 5、ペレットをGEDT^で1回洗浄し、6.ペレット
を70%エタノールで2回洗浄し、7.ベレットをアセ
トンで1回洗浄し、8.ペレットを、蓋を開放して56
℃で10分間乾燥し、9. RNAsinを含まないT
EII l液50,fを用いてN^を溶出し、 10. 12000x gで2分間遠心分離すると、上
澄みはN^を含有した。
いった複合出発材料からN^を単離する〈同時にdsD
N^、ssDNA, dsRNA及びs s R NA
を精製する)のに適しており、L6 900μ!及びS
C 40.1を含むEppendorf f試験管を使
用した。
え、直ぐに渦形成(約5秒間)して均質化し、3,室温
に10分間放置し、5秒間渦形成し、4. 12000
x gで15秒間遠心分離し、吸引によって上澄みを廃
棄し、 5.ベレッ1〜をL2で2回洗浄し、 6,ペレットを70%エタノールで2回洗浄し、7,ペ
レットをアセトンで1回洗浄し、8.ペレットを、蓋を
開放して56℃で10分間乾燥し、 9.必要によってはRNAsinの存在下に、TE}I
街i50パを用いてN^を溶出し、 10. 12000x gで2分間遠心分離すると、上
澄みはN^を含有した. 乙ジΣユ玄叩 このプロトコルは、ヒト血清、尿またはバクテリア培養
液といった複合出発材料からN^を単離するのに適して
いる。
ndorf f試験管を使用した。
物または一晩培養したバクテリア培養液)50μlを加
え、直ぐに渦形成(5秒間)して均質化し、3,混合し
ながら室温に10分間放置し、4. 14,000 ,
で15秒間遠心分離し、吸引によって上澄みを廃棄し、 5.ペレットをL2車洗浄液で2回洗浄し、6.ベレッ
トを70%エタノールで2回洗浄し、7.ベレットをア
セトンで1回洗浄゛し、8.ペレットを、蓋を開放して
56゜Cで10分間乾燥し、 9,必要によってはRNAsinの存在下に、TE緩f
i液(10+aM Tris − 1mM EDTA
pll8.0)50ulを用いてN^を溶出し、 10. 14,000 gで2分間遠心分離すると、上
澄みはN八を含有した。
SCN、及びN^を結合できるフィルター(材料及び方
法の項参照)の存在下に、N^を単離するのに適してい
る。N^検出は、このフィルターをポリメラーゼ連鎖反
応混合物に直接適用することによる、ポリメラーゼ連鎖
反応によって実施し、従ってフィルターからN^を予め
溶出しない。
m/icm)を含むEppendorff試験管を使用
した。
し、 2.混合しながら室温に10分間放置し、3.上澄みを
廃棄し, 4、フィルターをL2洗浄液で2回洗浄し、5.フィル
ターを70%エタノールで2回洗浄し、6.フィルター
を、蓋を開放して56℃で10分間乾燥し、 7.フィルターの小片をポリメラーゼ連鎖反応溶液に直
接加えた。
いった複合出発材料から貼を単離するのに適しており、
L5 900p/及びSC 40,1を含むEppen
dorf f試験管を使用した.単離したN^はハイブ
リッド形成反応に使用すること゛ができるが、制限酵素
に対する基質としてはやや適当でない.しかしながらT
4 DN^リガーゼは活性である。プロトコルYと比較
してプロトコルZではN^の収率が高くなる。
え、直ぐに渦形成(約5秒間)して均質化し、3,室温
に10分間放置し,5秒間渦形成し、4. 12000
x gで15秒間遠心分離し、吸引によって上澄みを廃
棄し、 5.ペレットをL2で2回洗浄し、 6.ペレットを70%エタノールで2回洗浄し、7.ベ
レットをアセトンで1回洗浄し、8.ペレットを、藍を
開放して56℃で10分間乾燥し、 9.必要によってはRNAsinの存在下で、TE緩衝
液50,Zを用いてN^を溶出し、 10. 12000x IFで2分間遠心分雛すると、
上澄みは貼を含有した。
〜D)、以下のようなセクションに分割した. セクションA:ヒト血清 セクションB:ヒト全血 セクションC:ヒ1・尿 上記セクションA,B及びCは特に、dsDN^及びs
sRNAの両方を純粋形態で単離できることを示す意味
がある。
を示す. セクションE:一重鎖DNA このセクションEは、本発明が、ssDN^を単離する
ために使用できることを示す実験からなる。
シリカ粒子として非常は有効であ,ることを示す.更に
、本発明が、種々のダラム陰性菌からN^を単離するた
めに使用できることも示す。
細菌細胞からN^を精製できることを示す。
単離を示す。
用した血液は常に、凝固を防止するためにEDT八の存
在下に採取した鮮血とした(Terumo N.V.,
Louvain,ベルギーのVenoject装置、タ
イブVT−574TKZの採取管を使用)。他のセクシ
ョンに使用した出発材料(血清、尿及び便)は冷凍物で
あった。
F1において、血清または血液は同じ被検体由来であっ
た。
、^aij及びBorstが記載した(Biochim
.Biophys.^eta 269,1972.19
2)緩衝液系に臭化エチジウムlIIg/mlを含有す
る中性アガロースゲル上にロードした。ゲルにU■照射
して写真撮影した。
ットDNA)を臨床試料に加えた。これらのケースにお
いて、抽出効率100%に対応する量のインプットDN
^を同じゲルにロードした。
たように(Nucleic Acids Res.9,
1981.2989)、EschericbiaCol
i 118101から細菌ブラスミドDNAを精製し、
Sepharose CL 2B(PharIIIac
ia,Inc.)を用いたカラムクロマトグラフィーに
かけ、エタノールで沈澱させた, Birnboim及
びDolyが記載したように(Maniatis, T
.ら,Nolecular Cloning,CSII
,ニューヨーク)、Escherichia Col
i JM101(J.Messin8Rec.DNA
Techn.Bull.2:43−48(1979))
から細菌プラスミドDNAを精製した。pcMV−Eは
、2kbベクターpHC 624(Boros in
gene 30,1984.257)においてクローニ
ングされた0.4kbヒ1・サイトメガロウイルスDN
A断片を含み、pEBV−10は、同じベクターにおい
てクローニングされた0.9kb Epstein [
larrウイルスDNA断片を含む。緩和環状(Cll
)分子(relaxedcircular IIlol
ecules)を豊富に含むプラスミド調製物を得るた
めに、pEBV−10 DNA(2.9kb)をDNA
seで処理した。成分■分子は、3 . 2 k b
緩和環状[IN八分子としてビリオン中に存在するB型
肝炎ウイルスDNAの精製のためのモデルの役目をする
。
、pGem3p24の横成は以下に記述する。
る(J.Viro1,61,633−637(1987
);Nature 326,711−713(1987
) ;^ids Res.IIum.ReLrovir
us 3,41−55(1987);^ids Res
.lIun.Retrovirus 3,33−39(
1987)及びSience 237,B88−893
(1987))。
とのII I V It x B2配列の1189及び
2613部位で切断した。ヌクレオチド番号は遺伝子バ
ンク指定を参照されたい。
enow)DN^ボリメラーゼ(Haniatias.
上記参照)を使用して充填し、ブラスミドpUc−19
のポリリンカーS+*a 1部位においてクローニング
した(Maniatias,前記参照)。II I V
11 x B 2 D N^フラグメンl・を担う得
られたブラスミドをpUc19−p24と称した。
−p24の1450bp EcoRI−Bam旧フラグ
メントをEcoRI−Ba+ntlI消化ベクターpG
em3においてクローニングした(2867bp;l’
romega Corporation,Madiso
n US^)。
(o1 igo−syntliesizer)装置(A
pplied Biosystem製)において合成し
た。プライマーES47(25mer)及びES75(
47mer)のヌクレオチド配列を以下に示す。
ATTA(:ES75 ほとんどのRNA単離実験において(実施例^3、B5
、B6、B7、C2、D1、E1、F1及びF2)、精
製過程の間のRNΔの分解を回避するために溶出用緩衝
液中にRNAsinを任意的に使用する以外には、予防
策を講じなかった。臨床試料を試験管に付加する際にの
み手袋をはめ、試薬の調製に対してはRNAse阻害剤
を使用せず、オートクレープ処理しないEppendo
rff容器及びビペツ1・チップを使用した。特に実施
例F1及びF2は、溶出の際のRNAs i nの存在
は厳密には必要でないことを示した。
るままに使用した。RNAse^同様に全ての制限酵素
T4リガーゼ及びAMV逆転写酵素はBoehring
er(Mannheim)製であった.″:!]I −
D N 八ボリメラーゼはCetus Inc製とし
た。ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)はPerkin
EI+ner Cetus DN八一熱循環器を用いて
実施した。
特にN^キャリャー(例えばシリカ粒子)及びカオトロ
ピック物質を含む溶解用及び洗浄用緩衝液は、核酸(例
えばNΔ含有の細菌またはウイルス)によって汚染され
るべきではないことは基本的に重要である。これは、N
^キャリャーに対しては、これをオートクレープ内で1
21℃で20分間加熱することにより保証され得る。し
がしながら、この方法はGuSCN含有の溶解用及び洗
浄用緩衝液((;EDT^、L5、L6及びL2)にお
いては、活性が失われる可能性があること、及び環境に
対する付随的な危険性があることから有効ではない。上
記試薬を(出来る限り)核酸を含有しないようにするた
めに、かかる試薬を本発明のシリカ粒子のカラムに通す
ことができる。GuSCN含有緩衝液の溶解(Iysi
ng)特性、及びカオトロピック物質GuSCHの存在
下にN^を結合するシリカの特性に起因し、かかる方法
でN^非含有の緩衝液が得られる。カラム自体は、例え
ば500℃またはそれ以上で1時間以上加熱することに
より、核酸非含有にすることができる。
:緩和くニック)環状DN^(プラスミド)、CI
目 :線状DN^(線状化プラスミド)、LMW :
低分子旦DN^(<0.5kb).pllC 624の
石■消化、471bp、404bp、242bp(2フ
ラグメント)、190bp、147bp、110bp、
67bpのフラグメント及び数個のより小さい不定長の
フラグメン1・、 MMll1=中分子.iDN^(0.5〜29kb)
;ファージλDNAのI1iodl消化、23kb、9
.4kb、6.7kb、4.4kb、2.3kb、2.
Okb及び0.58kbのフラグメント、 HMW :高分子iLDN^(> 29kb)、ssDN^:フ
ァージ813s+p9一重鎖DNA(BoebrinF
1er)。
トの血清には例えばウイルス又は細菌中にN^が存在し
得る。これらの有機体は共に遊離形憇で生じ得、更には
免疫複合物中に結合して生じ得る。
泳動及びエチジウムブロミド/N^複合体の紫外線照射
を通じての検出は不可能である。DN八をヒトの血清か
ら精製できることを示すために、微量の精製ON八を血
清に加え、次いでプロトコルBに基づいてDNAを単離
した(実施例^1.^2)。DNA及びRNAをヒトの
血清から同時に精製できることを示すために、培養した
噛乳動物細胞又は《小さなプラスミドを有する》細菌を
血清に加え、次いでプロトコルYに基づいてN^を単離
した《実施例^3》.最後に実施例八4は、プロトコル
Yによりヒトの血清に存在するRNAを旧V(ヒトの免
疫不全ウイルス)から精製でき、またPCR法により検
出できることを示している.実施例^5は、ヒトの血清
中のDNAをプロトコルY*により、核酸結合性固相と
してのシリカと共に種々のカオトロピック物質を使用し
て精製できることを示している。
0μ!LHl4 (45μg)、20μl MMM(2
0μg)、40μl CI/II(20μg)]と混合
し、10個の66μ!試料をプロトコルBに基づき10
個のDNA抽出物用インプット材料(input ma
terial)として使用した。この実験では試験管中
に存在するSC(Silica Coarseの懸濁液
)の量を2.5〜40μ!で変動させた。抽出を二重に
実施し、各試料からの溶離DN^の半分(30μl)を
1%アガロースゲルを支持体とする電気泳動にかけた。
トロールレーン(lanes)の同一ゲル上にロードし
た. SCの量が10μlを越えると、二重鎮DNA、線状(
23kb〜約60bp)共有結合閉鎖(CI)DNAも
緩和環状(Cll)DNAも効率的に単離された。最大
8811フラグメント(約23kb)の収率はより小さ
なフラグメントと比較して比較的低いようである.この
ことは他の実験から考慮すると、分子量の大きいフラグ
メントのせん断のせいであろう。
場合のL14W,Cll/CI及び88111 0N^
の量を示している.前述した如(、Cllに富む(DN
Ase Iで処理した)3kbプラスミド(pEBV−
10)をインプット材料として使用した. ること 精製DNA調製物を50μlのヒトの血清試料12個に
加えた.プロトコルBに基づいてこれら12個の混合物
からDNAを単離した。50μ!のTEで溶離を実施し
た。溶離したDH八の半分を以下の3種の制限酵素:石
Rl,BamH!,川I1(これらはそれぞれ低塩、中
塩及び高塩MWI液で活性を有する)のいずれかで(二
重に》処理するか、T4 DN^リガーゼで処理するか
、又は処理しなかった, DN^試料を1%アガロース
ゲルを支持体とする電気泳動にかけ、紫外線照射により
可視化した. T4リガーゼ処理(37℃で1時間、30μlの反応容
量中に3単位のT4リガーゼ)の結果は、DN八フラグ
メントの分子量のシフトを示すと共に、ヒトの血清から
単離したDH八がエキソヌクレオリティックな(exo
nucleolytic)分解の影響をそれほど受けな
いことを示している。
l.5μ1)を加えた8個の血清試料の結果はそれぞ
れ、EcoRI、B a m H I ,LL! I
Iダイジェストに対して総ての制限酵素がプラスミドを
線状化したことを示している。
30μlの反応容量中でインキユベートした。
原 ヒトの血清にはく例えばウイルス、細菌又は細胞中に》
、エチジウムブロミドで染色したゲルの紫外線照射によ
っては検出することのできない非常に少量のRNAしか
存在しないので、外因性RNA源をヒトの血清試料に加
えた.r@乳動物の細胞又は細菌を外因性RNA源とし
て使用した。プロトコルYに基づいてN^を試料から単
離し、RNAse^(40ng/μlの溶離用緩衝液)
の存在下で又は不在下で、0.5U/μ/のRNAsi
nを含む50ttlのTEで溶離した.1%アガロース
ゲルを支持体とするその後の電気泳動の結果は、RNA
及びDN^が検出できることを示している.50μlの
血清試料に対して加えた噛乳動物の細胞は5X10’ラ
ット10B細胞(Boom等、J.Gen.Virol
. 69,1988.1179)であり,50μ1の血
清に対して加えた細菌はプラスミドpcMV−Eを含む
E.coli細胞株HBIOμmの100μl一晩培養
物の細胞ベレットであった. ^4:ヒトの血 から単離したヒトの プロトコルYに基づいて各々が50μlのヒトの血清試
料2個(患者F,H)からN^(75μ!)を単離した
。患者Fの血清は(^bbott研究所のIIIV P
24抗原固相免疫検定法に基づく》多量(2700pg
/伯l》のHfv抗原P24を含んでいたが、(^bb
ott研究所のIIIV抗体EIjS^に基づ()tl
rV抗体に対しては陰性であった.患者Hの血清は両方
の試験で陰性であった.単離したN^の一部(43μ1
)を37℃で90分RNAseを含まないDNAse(
Boehringer;10 DNAse/,uf)で
処理した。エタノールでの沈澱及び68℃で15分間の
熱不活化の後に、RN八を15μlのTEM街液に懸濁
した。
イマーの存在下において、0.4tl/μlの^MY逆
転写酵素(42℃で30分;反応容量20μ1)で処理
するか又は処理しなかった.次いで、dNTPsを含む
80μlの1.25 X濃縮PCRil街液を加えて、
反応容量を100μlにした, IUの論− D N
Aポリメラーゼを加えて、増幅を開始した(lサイクル
は95℃で1分間、55℃で1分間、72℃で2分間か
らなる》.20、25、30、35サイクルで反応混合
物から10J.L1のアリコートを採取して、2%アガ
ロースゲルに適用した.逆転写酵素で処理した患者Fの
RN八については既に25サイクル後に予期される33
0 bp HIVアンプリマー(amplimer)フ
ラグメントが確認され、HIVRNAが患者の血清に存
在することを示唆していた.抽出後に、各試料から溶離
したDN^の25%を0,8%アガロースゲル上で分析
した。プラスミドDNA回収の定量化を可能とするため
に、インプットDNAを同様に同一ゲル上に直接ロード
した。
効率をブラスミド帯強度(表^5.1の表の説明を参照
)を基に視覚的に評価した. カオトロピック物質としてNal及びNaSCNを使用
して、同様に実験を実施した(下記の試料の説明を参照
). 50μlのヒトの血清試料10個を、CI及びCll形
態(方法の項参照)からなるそれぞれが10μgの精製
pGem3p24 DNAと混合した.これら10個の
1ラスミド/血清混合物を、プロトコルY*に基づいて
抽出用インプット材料として使用した。使用した力オト
ロビック物質の濃度については表^5.1を参照のこと
. 表の説明: 表に記載のカオトロピック物質を使用して、前述したよ
うに10個の検出可能試料を製造した。
I、38 Mal又は38 NaSCNをカオトロピッ
ク物質として使用すると、共有結合閉鎖(CI)及び緩
和環状(Cll)pGem3p24 DN^が効率的に
単離されることを示している。Cllの収率はCIと比
較して比較的高いようである. セクションB:ヒトの全血からのDNA RNAの1+
a1のヒトの血液は、核生成せず従って血液のN^量に
寄与しない約5X10”の赤血球を含んでいる。
m1)により決定される。多量のタンパク質(血液中、
約70B/ml)を含む水性媒体(血漿)にこれらの細
胞が埋め込まれている。従って、全血はN^精製にとっ
て極めて不純な源である。セクションBの実施例は、に
もかかわらすN^をプロトコルB及びYにより全血から
単離することができることを示している. B1:ヒトの全血からのDN八の ヒトの血液(500μ1)を、既知量の精製DH^[1
00μlのLMW(45μg》、80μlのCl/II
(40μg)]と混合し、68μlの試料10個をプロ
トコルBにおける10個のDNA抽出用インプット材料
として使用した.この実験では、試験管に存在するSC
(シリカ粗材の懸濁液)の量を2.5〜40μlの間で
変動させた.抽出を二重に行い、各試料からの溶離ON
^の半分(30μ1)を、1%アガロースゲルを支持体
とする電気泳動にかけた.比較のために、インプットD
N^の半分の量を同様に同一ゲル上にロードした.10
μlを越えるSCを使用すると、二重鎖DNA、線状共
有結合閉鎖(CI)DNAも緩和環状(CII)DNA
もヒトの全血から効率的に単離された.全血から回収さ
れるDNAの量は、約10μpまではSCの量に比例し
ていた.量が多くなると飽和するようである.精製DN
A調製物を、50μlのヒトの血液試料12個に加えた
.プロトコルBに従ってこれら12個の混合物からDN
Aを単離した。50μlのTEで溶離が生じた.溶離し
たDNAの半分を以下の3種の制限酵素: EcoRI
,[lamlll追dII(これらはそれぞれ低塩、中
塩及び高塩緩衝液で活性を有する)のいずれか1つで処
理するか、T4 DN^リガーゼで処理するか、又は処
理しなかった, DNA試料を1%アガロースゲルを支
持体とする電気泳動にかけ、紫外線照射により可視化し
た. T4リガーゼ処理(37℃で1時間、30μlの反応容
量中に3単位のT4リガーゼ)の結果は、DNAフラグ
メントの分子量の増加を示すと共に、ヒトの血液から単
離したDN^がエキソヌクレオリティックな分解の影響
をそれほど受けないことを示している。
.5μffi)を加えた8個の血液試料の結果はそれぞ
れ、EcoRI、石旧,LILUI Iダイジェストに
対して、総ての制限酵素がプラスミドを線状化したこと
を示している。
30μlの反応容量中でインキユベートした。
の血液の異なる10個の試料を出発材料として使用した
。各試料において白血球細胞(WBC)の数は知られて
いた.プロトコルBに従って50μlの試料からDNA
を精製し、75μlのTEで溶離が生じた.単離したD
NAの三分のーを1%アガロースゲルに直接適用し、残
余部分(2μ!)をPCR用に使用した。
試料に加えた後に、同一の試料で同一の単離作業を゛実
施した.この場合も25μ1の溶出液(eluate)
(75)t l)をゲルに直接適用した.25μlの溶
出液の他の部分を最初に74 DNAリガーゼで処理し
く37℃で1時間、30μlの反応容量中に213)、
次いで同一ゲルに適用した. 血液試料1〜10の白血球細胞(WBC)の含量は以下
の通りであった. 1 4,9 6
8.32 5.1
7 8.53 5.9
8 9.24
6.7 9 10.35
7.7 10
10.5プロトコルBに基づいてヒトの全血から単
離したDNAがTJ − D NAポリメラーゼに対し
て良好な基質であることを示すために、実施例B3に従
って10個の異なる血液試料から単離した2μpのDN
八を、βグロビン特異的ブライマーを含むPCRで処理
した。
で1分間、次いで65℃で3分間であった。アンプリマ
ーの一部《50%》を2%アガロースゲルを支持体とす
る電気泳動にかけた。120 bpのアンブリマー及び
ブライマー帯を検出することができた。
ヒトの血 からのDN^ びssRNAの同DNA及び
RNAを再現し得る形でヒトの血液から精製できること
を示すために、一人のヒトから得た各々が50μlの6
個の血液試料をプロトコルYに基づいて処理し、RNA
sin(0.5U/,cz 1)を含む75μ1のTE
でN^を溶離した.溶出液の一部25μlを中性1%ア
ガロースゲルに適用して、電気泳動にかけた。結果は、
DNA及びRNAが検出できることを示している. 10人の異なるヒトから得た50μlの血液試料(実施
例B3参照)をプロトコルYに基づいて処理し、0.5
U#z 1のRNAsinを含む40μlのTEでN^
を溶離した.溶出液の一部30μIを中性1%アガロー
スゲルを支持体とする電気泳動にかけた。結果は、DN
^及びRNAが検出できることを示している.外因性R
NA源をヒトの血液試料に加えた。噛乳動物の細胞又は
細菌を外因性RNA源として使用した。プロトコルYに
基づいて試料からN^を単離し、RNAse^<40n
g/tt 1の溶離用#ILl液》の不存在下又は存在
下において、50μITE +0.5 U/μlRNA
sinで溶離した。50μlの血液試料に対して5X1
0’ラ・ント10B細胞(Boo+a等、J.Gen.
Virol. 69,1988.1179)を噛乳動物
細胞として加え、50μlの血液に対し”C 7 ラス
ミF pcMV−Eを含tjE.coli細胞株Htl
101ノ100μ!一晩培養物の細胞ペレットを細菌と
して加えた. 結果は、噛乳動物のssRNA(18S及び28Sリボ
ソー十も ムRNA)も細菌@ s s R N^(16S及び2
3SリポソームRNA)もヒトの全血から精製され得る
ことを示している。
^が効率的に回収される。
の尿ではN^は、例えばウイルスまたは細菌中や尿路由
来の細胞中に存在し得る。量は普通、エチジウムブロミ
ド/N^複合体のアガロースゲル電気泳動及びUv照射
による検出が不可能なほど少ない.ヒト尿からDH八を
精製し得ることを示すために、マイクログラム量の精製
DNAを尿に添加し、続いてプロl・コルBに従ってD
NAを単廻したく実施例C1).ヒト尿からDNAとR
NAとを同時に精製し得ることを示すために、培養した
細菌(小ブラスミド保有》を尿に添加し、続いてN^を
プロトコルYに従って単離した(実施例C2)。
してシリカと共に、GuSCNに替えてKl、Nar及
びNaSCNのような別のカオトロピック物質を用いて
もヒト尿からDNAを精製し得ることを示す.C1:ヒ
ト尿からのDNA 3μ1のLMW DN^(6μg》を、任意に選択した
10の、様々な混濁度の50μ1ヒト尿試料に添加した
(試料第4号、第5号、第6号及び第7号は澄明であり
、試料第1号、第2号、第3号及び第8号は僅かに混濁
し、試料第9号及び第10号は非常に混濁していた)。
E 73街液で溶離した。各溶出物の173を1%アガ
ロースゲルに適用した。別の部分25μ1を1.8Uの
T4 DN^リガーゼで(反応量30μ!において37
℃で1時間)処理し、やはり上記ゲルに適用した。マー
カーレーンはLMIII DN^及びMH DN^をそ
れぞれ含有する.マーカーレーン中のLMW DN八の
量(2μg》は、抽出効率100%で観察されるべき量
を表す.実験結果は、プロトコルBでヒI・尿がらDN
^を有効に精製し得、得られるDNAはT4 DN^リ
ガーゼのための優れた基質であることを示す。
に分解されていた。しかし、(この実験で用いたような
)裸のDNAは尿試料中にヌクレアーゼが豊富であれば
分解されるだろうと予想できた.従って、分解は精製時
にではなく、それ以前の尿/DNA混合物調製時に起こ
ったと考えられる.次の実施例(C2)は、(裸の場合
に反して)細胞中に存在するDNAは、特にssRNA
までもが尿試料第10号から有効に回収できることを示
す。
では、実施例CIで用いたのと同じ10の尿試料を、2
.4kbの1ラスミド(pcMV−E)を保有する細菌
と混合した。混合物からN^をプロトコルYに従って単
離し、かつ75μ1のTEII 衝液中に0.5U/μ
I RNAsinを用いて溶離した.溶出物の173を
1%アガロースゲルでの電気泳動に掛けた。溶出物の別
の部分25μ1を10Uの、pcMV−Eを直頷化する
制限酵素EcoR lで処理した(反応量30Atlに
おいて37℃で1時間)。この処理は4 0 n g
/μl RNAse^の存在下に行なった.電気泳動の
結果は、23S及び16SリポソームRNA、並びに共
有結合で閉じた形態(CI)及び直鎖形i(CI[[)
のブラスミドDNAを示す。
質、溶菌(lysis)緩衝液L6寧及びtμsのpG
em3p24DN^と混合した.得られた懸濁液を全部
、プロトコルY本によりDNAを精製するべく500μ
1のカオトロピック物質(表03.1参照)及び40μ
μmのSi02に混合添加した。尿から単離したDNA
の量を、アガロースゲル電気泳動を用いて解析した。D
NA回収効率を実施例^5に述べたようにして判定した
結果を表03.1にまとめる. 人竪ユ ? 8a1 3M/SiOz
+ +4 NaSCN 3
8/Sin■ 十
+表03,1は、CI型及びC■型プラスミドDNAの
DNAバンドの収率が同じであったことを示す.施例0
1:ヒト 便からのロタウイルスdsRNA精レオウイ
ルス(Reovirdae)利のウイルスは、二重jl
RNAから成るゲノムを有する。この科に属する重要な
病原体は、重症の下痢を惹起し得、従って糞便試料中に
大量に存在するロタウイルスである。ロタウイルスのゲ
ノムは11個のdsRNAセグメントから成り(His
hino in J. CIin. Nicrobio
l.21, 1985. 425参照》、これらのds
RN八セグメントはプロトコルBによって糞便上清から
単離可能である。下痢試料を12000xgで2分間遠
心分離して得た上清100μ1を用いて単離を行なった
。
ウイルスラテックス試験及びKallestad Pa
Ll+rinderロタウイルス直接抗原検出系によっ
て)確認された6人の異なる患者から採取した試料を用
いた結果、dsRNAを抽出できることが判明した。
トコルBまたはYのためのインプット物質として直接用
いても同様の結果(V通、ロタウイルスdsRNA収率
はより高い)が得られた。
料から一重IDNAも単離できることを示すために、1
μg(4μ1》の精製ファージ813 0N^(Boe
hringer社のM13mp9 DN^》を50μ1
のヒト血清、ヒト血液またはヒI・尿に添加し、プロト
コルBまたはプロトコルYによって精製した。いずれの
抽出作業も4回ずつ行なった。DNAを50μlのTE
緩衝液中に溶離し、25μ1を1%アガロースゲルでの
電気泳動に掛けた。マーカーレーンは500ngの81
3ssDN^を含有する. この実験の結果から、一重鎮DNAをヒト血液、血清ま
たは尿からプロ1〜コルYによって、また程度はより低
いがプロトコルBによっても単離できることが判明した
。
はほぼ完全にSi02から成るので、ケイ藻土が使用シ
リカとして有用であるかどうか調べた。5種の異なる市
販ケイ藻製品[JanssenBiochis+ica
, Louvain, BelgiumのCelato
m FW14、Celatom FW50、Celat
om FW60、Celite (ΔK》及びCeli
Le 521]各10gを501の2回蒸留水及び50
0μ1の37%HCIと混合し、得られた懸濁液をオー
トクレーブで20分間121℃に加熱した。実施例F1
及びF2において、上記のように生成した懸濁液をプロ
トコルYによるN^抽出に用いた。
li fllllo1細菌と混合し、一晩経過した培養
物100μlの細菌ペレットを50μ!の血液に添加し
た。
インプット物質として用いた。40μ!のSCに替えて
、40μμmの上記ケイ藻土懸濁液を用いた。N^を7
5μ1のTE緩衝液中に、RNAse阻害物質を用いず
に溶離し、20μlの溶出物を直接ゲルに付与した。
たRNAse^(40ng/u l)で反応量25μ+
において37℃で1時間処理してからゲルに付与した。
。
結合特性を有することが判明した, dsDN^(成分
1分子》とssRNA(23S及び16S rRNΔ)
との両方が結合した。プラスミドDN^は、Ba+nH
Iによって完全に直鎖1ヒされる(成分■)ほど十分に
純粋であった。
類の異なるダラム陰性菌種を固形寒天プレート上で培養
した。上記各相菌種を5〜10μ1ずつプレートから掻
き取って、プロトコルYによるNΔ抽出のためのインプ
ット物質として用い、また40μμmのSCかまたは4
0μlのCelite 521懸濁液をHAキャリャー
として用いた。
らなかったが、これは、たとえ(3分を越える)長時間
渦形成を行なったとしてもちはやN^シリカ複合体を均
質化し得なくなったからである。
行することができたが、これはおそらくケイ藻土の粒径
がSC粒子の粒径より大きかったためであろう。
に溶離し、溶出物の一部(20μl)を1%アガロース
ゲルでの電気泳動に掛けた。
type 35: Haemopl+ilus i
nfluenzae type bこの方法で、I
IMW細菌DN^及びrRN八を検出することができた
。
ある。細菌細胞中には、高レベルの高分子量DNA(I
IMW DNA)及びリポソームRNAが存在する。
してシリカと共に様々なカオトロピック物質を用いて精
製できることを示す。
を、900μ1のカオトロピック物質及び40μ1のS
iOzの存在下に単離した。高レベルのHMIII D
N^及び内在リポソームRNA(16S及び23S)が
、エチジウムブロミドで染色したゲルのUV照射によっ
て単離HAを検出することを可能にする。単離はプロト
コルY*に従って行ない、溶出N’Aの25%(40μ
1部分)をアガロースゲル上で解析した. 細菌細胞からの内在RNA単離のための基準として、E
. colirRNAマーカー(Boehringer
)を用いた。
せ る の固相とを用いる 叶人庫肩一 GuSCN及び幾つかのシリカ誘導体またはラテックス
粒子(゛材料及び方法゜゛参照)を用いてN^単離/精
製を行ない得ることを示すために、純粋なプラスミドを
低塩緩街液(Tris 10mM − EDT^1mM
, pll8.0)に添加し、その後プロトコルYに従
って単雛したが、その際ステップ7及び9は省略した(
TEでの溶離を行なわなかった)。結合したN^を伴っ
たシリカ/ラテックス粒子をPCR反応混合物中に導入
した。単離したDNAはPCR法によ.って検出し得る
。
と共に別の固相を用い、かつPCR法で検出を行なうこ
とによってN^を精製し得ることを示す。
0μ1のTris 10+M/EDT^1mM(pH8
.0)中に存在する0.5μgのpGem3p24を、
80μ1のシリカ懸濁液または80μμmのラテックス
懸濁液(゛材料及び方法”参照)及び900μ1の溶菌
M衝/IIL8と混合した。
(溶離ステップ省略》、ペレットを50μ1の水に再懸
濁した。プラスミドーシリ力懸濁液の20μ1部分を、
IIIV特異的ブライマー(゛゜材料及び方法゛参照)
の存在下にPCR混合物中に用い、5μ1の10倍濃縮
P C R f−J街液と、1μ1の10mM dNT
Pと、2単位のbl−DNAポリメラーゼと、最終量を
50μ1とする量の水とを添加して増幅反応を開始させ
たく95℃で1分、37゜Cで1分、更に72゜Cで3
分を1周期とする)。
り分け、2%アガロースゲル上で解析した。ラテックス
粒子でN^を単離した場合、シリカで単離した場合のよ
うなペレットは得られなかった.1+nlの洗浄液L2
を300μ+の70%e t O IIと混合したとこ
ろ、二つの液相間にラテックス含有バンドが見いだされ
た。ラテックス粒子はその色によって検出可能である.
単離したラテックス含有画分を70%E t O tl
で2回洗浄し、遠心分離すると、該画分はEppend
orff管内で小さいペレットを形成した.剋 セクション■二N八 人フィルター びGuSCNを用
い化Mill DN^)の検出レベル 1 粗シリカ(対照)++ 212M^^M−C2 十 312M^八M−C3 十 412M^^M−C4 +5
12 MAAM−C6 + +
612M^^M−C8 十 712M^^M−CIO +812
M^^M−018 ++9
VQ69(疎水性)++ 10 VQ 58B (疎水性)++11
^GY 1515 (親水性) +1
2 ^CF 27G (親水性)
十13 ^CN3red (親水性)
十八夕L 結果を表H1にまとめる。30周期後、予想した290
bp FIIVアンブライマーフラグメントを総ての事
例で観察した。フラグメン1・のサイズを、やはりゲル
上に載置したマーカーφx 174 RFDNA tl
ae[[ digest (PI+arIIlacia
)と比較した。
レベルの1+1V特異的290bpフラグメントをアガ
ロースゲル上に検出したことを表す。
シリカの場合より低いことを表す. プロトコルY*本による核酸の単離では、SiOzの替
わりにN^結合フィルター(′゛材料及び方法゛参照)
を用い得る。
pll8.0)中では通常DNAの放出が起こらないが
、場合によって生起するこの問題点は、DNAを結合さ
せたフィルターからDN^を溶離する替わりに該フィル
ターをPCR反応混合物中に仙入することによって排除
できる。実施例I1は、N^結合フィルター及びカオト
ロピック物質としてのGuSCNを用い、かつPCR法
で解析することによってN^を精製し得ることを示す。
0μI中の純粋なpGeIIl3p24 DN^(濃度
1μg、0.01μg及びO.OO5μg)を、寸法1
cmX lamの3個のDN^結合フィルター及び90
0μ1のGuSCN(溶菌桜所液L8)に添加した。
略)及び56℃での乾燥の後、DNAを結合させたフィ
ルターを直接PCR混合物中に導入した。l{IV特異
的ブライマーの存在下に、PCRサイクラーで増幅を行
なった。
、1μ1の10階14 dNTPと、2単位のシL!L
DN^ポリメラーゼと、最終量を50μ1とする量の水
とを含有する9続いて、増幅反応を開始させた。
分け(実施例H1参照)、2%アガロースゲル上で解析
した. 及U DNA量 DNAの量 1 11ybondN 1.0
μg +2 11ybond
N O.01 ttg O3
I1ybond N O.005μH
O4 ニトロセルロース 1.0
μg +5 ニトロセルロース 0.01μ
gO6 ニトロセルロース 0.005μg07
PVDF−millipore 1.0 μ
g ++8 PVDF−millip
ore O.01 1tH +9
PVDF−millipore O.005μg
+フラグメントを観察した.フラグメント
を市販φxllaeIIと比較した。
に染色された290bpフラグメントを検出 +: 290bpフラグメントを検出 0: 290bpフラグメント検出せず比較として:
PCR増幅混合物に添加した7ngの精製pGem3p
24 DN^は、“++”として定量される290bp
フラグメン1・をもならす。
Claims (15)
- (1)核酸を含有する出発材料から核酸を単離するため
の方法であって、出発材料、カオトロピック物質及び核
酸結合性固相を混合し、核酸が結合した固相を液体から
分離し、その後、こうして得られた固相−核酸複合体を
洗浄し、必要に応じて核酸を該複合体から溶離すること
を特徴とする方法。 - (2)使用される出発材料が全血、血清、バフィーコー
ト、尿、糞便、脳脊髄液、精液、唾液、組織及び細胞培
養物のような、核酸を含有する生物材料であることを特
徴とする請求項1に記載の方法。 - (3)使用されるカオトロピック物質がグアニジニウム
塩、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、(イソ)チオ
シアン酸ナトリウム、尿素又はその相互の組み合わせか
ら構成される群から選択されることを特徴とする請求項
1又は2に記載の方法。 - (4)グアニジニウム塩が(イソ)チオシアン酸グアニ
ジニウムであることを特徴とする請求項3に記載の方法
。 - (5)使用される核酸結合性固相がシリカ粒子、ポリマ
ー材料、フィルター材料、ポリスチレンビーズ又はニト
ロセルロース紙から構成される群から選択されることを
特徴とする請求項1に記載の方法。 - (6)DNA及び/又はRNAを単離することを特徴と
する請求項1から5のいずれか一項に記載の方法。 - (7)実質的に0.05〜500μmの範囲の粒径を有
するシリカ粒子を使用することを特徴とする請求項1か
ら6のいずれか一項に記載の方法。 - (8)実質的に0.1〜200μmの範囲の粒径を有す
るシリカ粒子を使用することを特徴とする請求項1から
6のいずれか一項に記載の方法。 - (9)実質的に1〜200μmの範囲の粒径を有するシ
リカ粒子を使用することを特徴とする請求項1から8の
いずれか一項に記載の方法。 - (10)得られた固相−核酸複合体を沈澱させ、かつ上
清を廃棄することにより分離し、その後、カオトロピッ
ク物質を含有する洗浄用緩衝液で複合体を洗浄すること
を特徴とする請求項1から9のいずれか一項に記載の方
法。 - (11)洗浄用緩衝液で洗った固相−核酸複合体を更に
1種以上の有機溶剤で洗浄し、その後、乾燥することを
特徴とする請求項10に記載の方法。 - (12)洗浄及び乾燥した固相−核酸複合体中に存在す
る核酸を溶離用緩衝液により溶離することを特徴とする
請求項11に記載の方法。 - (13)こうして得られた該固相−核酸複合体を複数の
成分の混合物と接触させ、該固相に結合しているか又は
該固相から溶離した核酸を増幅することを特徴とする請
求項1に記載の方法。 - (14)請求項1に記載の方法を実施するための手段の
組み合わせ。 - (15)請求項13に記載の方法を実施するためのテス
トキット。
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