JP5225069B2 - 多発性骨髄腫の治療のためのcd38に対する抗体 - Google Patents
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Description
本発明は、特異的特徴を有し、およびとりわけ多発性骨髄腫を治療するために有用である、CD38に結合する抗体に関する。
多発性骨髄腫は、低い増殖指数および延長した寿命を有する分泌形質細胞の骨髄における潜在的な蓄積によって特徴付けられるB細胞悪性腫瘍である。本疾患は、最終的に骨および骨髄を攻撃し、骨格系全体にわたる多発性の腫瘍および病変を結果的にもたらす。
本発明は、以下によってコードされるヒトCD38に結合する抗体を提供する
(i)それぞれ、配列番号:1および配列番号:6に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;
(ii)それぞれ、配列番号:11および配列番号:16に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;
(iii)それぞれ、配列番号:21および配列番号:26に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;または
(iv)(i)、(ii)、もしくは(iii)に示されたような配列の保存的配列改変である、それらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸。
(i)CD38のアンタゴニストとして作用し;
(ii)本明細書の実施例18に記載された方法によって決定されるような末梢血単核細胞の有意な増殖を誘導せず;
(iii)本明細書の実施例19に記載された方法によって決定されるようなヒト単球または末梢血単核細胞による有意なIL-6の放出を誘導せず;
(iv)本明細書の実施例20に記載された方法によって決定されるようなヒトT細胞または末梢血単核細胞による検出可能なIFN-γの放出を誘導せず;
(v)本明細書の実施例12に記載された方法によって37℃で5〜15分以内にCHO-CD38細胞によって内在化されるように;CD38発現細胞によって内在化され;
(vi)本明細書の実施例5に記載された方法によって決定されるような、ダウディ-luc細胞において10ng/ml以下などの、15ng/ml以下のEC50値を有し、およびMM細胞において50ng/ml、30ng/ml、または10ng/ml以下などの、75ng/ml以下のEC50値を有するような;ADCCを誘導し;
(vii)本明細書の実施例6に記載された方法によってダウディ-luc細胞またはCD38-CHO細胞において1μg/ml以下などの、5μg/ml以下のEC50値を有するような;CDCを補体の存在下で誘導し;
(viii)cGDPRの合成を阻害し;
(ix)cADPRの合成を阻害し;
(x)本明細書の実施例20に記載されたような表面プラズモン共鳴によって決定されるような、例えば、7×10-9M〜10-10Mの範囲にある、10-8M〜10-11Mの範囲にあるような、10-8M以下の親和性(KD)でヒトCD38と結合する。
(i)ヒト抗体がヒトCD38に結合する、ヒトHv1263/3M28(VHI)生殖系列配列由来の重鎖可変領域アミノ酸配列およびヒトL15(VκI)生殖系列配列由来の軽鎖可変領域アミノ酸配列;または、
(ii)ヒト抗体がヒトCD38に結合する、ヒトVH3-DP-47/V3-23(VHIII)生殖系列配列由来の重鎖可変領域アミノ酸配列およびヒトL6(VκI)生殖系列配列由来の軽鎖可変領域アミノ酸配列。
(i)配列番号:1のVLヌクレオチド配列、
(ii)配列番号:6のVHヌクレオチド配列、
(iii)配列番号:1のVLヌクレオチド配列および配列番号:6のVHヌクレオチド配列;
(iv)配列番号:11のVLヌクレオチド配列;
(v)配列番号:16のVHヌクレオチド配列;
(vi)配列番号:11のVLヌクレオチド配列および配列番号:16のVHヌクレオチド配列;
(vii)配列番号:21のVLヌクレオチド配列;
(viii)配列番号:26のVHヌクレオチド配列;または
(ix)配列番号:21のVLヌクレオチド配列および配列番号:26のVHヌクレオチド配列。
(i)それぞれ、配列番号:1および配列番号:6に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖およびヒト重鎖核酸;
(ii)それぞれ、配列番号:11および配列番号:16に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;
(iii)それぞれ、配列番号:21および配列番号:26に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;または
(iv)(i)、(ii)、もしくは(iii)に示されたような配列の保存的配列改変である、それらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸。
(i)配列番号:2に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:7に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列;
(ii)配列番号:12に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:17に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列;
(iii)配列番号:22に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:27に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列;または
(iv)(i)(ii)(iii)に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列およびヒト重鎖可変アミノ酸配列の保存的配列改変。
(i)それぞれ、配列番号:1および配列番号:6に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖およびヒト重鎖核酸;
(ii)それぞれ、配列番号:11および配列番号:16に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;
(iii)それぞれ、配列番号:21および配列番号:26に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸;または
(iv)(i)、(ii)、もしくは(iii)に示されたような配列の保存的配列改変である、それらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸。
(i)配列番号:2に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:7に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列;
(ii)配列番号:12に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:17に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列;
(iii)配列番号:22に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:27に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列;または
(iv)(i)(ii)もしくは(iii)に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列およびヒト重鎖可変アミノ酸配列の保存的配列改変。
a)ペプチドとCD38の間の複合体の形成を可能にする条件下で、試料を上で定義されたようなペプチドと接触させる工程;および
b)複合体の形成を検出する工程。
a)ペプチドとCD38の間の複合体の形成を可能にする条件下で、上で定義されたようなペプチドを投与する工程;および
b)形成された複合体を検出する工程。
本発明は、多発性骨髄腫などの、CD38を発現する細胞が関与する様々な障害の治療、診断および予防において有用であり得る、CD38に結合するペプチド(「CD38BP」)を提供する。
(a)互いに独立に、配列番号:3、配列番号:4、および配列番号:5から本質的になる、3つのVL CDRを含む第1のVL領域;ならびに
(b)互いに独立に、配列番号:8、配列番号:9、および配列番号:10から本質的になる、3つのVH CDRを含む第1のVH領域。
(a)互いに独立に、配列番号:13、配列番号:14、および配列番号:15から本質的になる、3つのVL CDRを含む第1のVL領域;ならびに
(b)互いに独立に、配列番号:18、配列番号:19、および配列番号:20から本質的になる、3つのVH CDRを含む第1のVH領域。
(a)互いに独立に、配列番号:23、配列番号:24、および配列番号:25から本質的になる、3つのVL CDRを含む第1のVL領域;ならびに
(b)互いに独立に、配列番号:28、配列番号:29、および配列番号:30から本質的になる、3つのVH CDRを含む第1のVH領域。
(a)互いに独立に、配列番号:3、配列番号:4、および配列番号:5から本質的になる、3つのVL CDRを含む第1のVL領域;ならびに
(b)互いに独立に、配列番号:8、配列番号:9、および配列番号:10から本質的になる、3つのVH CDRを含む第1のVH領域。
(a)互いに独立に、配列番号:13、配列番号:14、および配列番号:15から本質的になる、3つのVL CDRを含む第1のVL領域;ならびに
(b)互いに独立に、配列番号:18、配列番号:19、および配列番号:20から本質的になる、3つのVH CDRを含む第1のVH領域。
(a)互いに独立に、配列番号:23、配列番号:24、および配列番号:25から本質的になる、3つのVL CDRを含む第1のVL領域;ならびに
(b)互いに独立に、配列番号:28、配列番号:29、および配列番号:30から本質的になる、3つのVH CDRを含む第1のVH領域。
a)抗体とCD38の間の複合体の形成を可能にする条件下で、試料を態様1〜176のいずれかによるペプチドと接触させる工程;および
b)複合体の形成を検出する工程。
a)抗体とCD38の間の複合体の形成を可能にする条件下で、態様1〜176のいずれかによるペプチドを投与する工程;および
b)形成された複合体を検出する工程。
(a)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVL CDRの間隔に近い)配列番号:3、配列番号:4、および配列番号:5の配列から本質的になる、3つのVL CDRならびに
(b)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVH CDRの間隔に近い)配列番号:8、配列番号:9、および配列番号:10の配列から本質的になる3つのVH CDR。
(a)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVL CDRの間隔に近い)配列番号:13、配列番号:14、および配列番号:15の配列から本質的になる、3つのVL CDRならびに
(b)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVH CDRの間隔に近い)配列番号:18、配列番号:19、および配列番号:20の配列から本質的になる3つのVH CDR。
(a)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVL CDRの間隔に近い)配列番号:23、配列番号:24、および配列番号:25の配列から本質的になる、3つのVL CDRならびに
(b)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVH CDRの間隔に近い)配列番号:28、配列番号:29、および配列番号:30の配列から本質的になる3つのVH CDR。
(a)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVL CDRの間隔に近い)配列番号:3、配列番号:4、および配列番号:5の配列から本質的になる、3つのVL CDRならびに
(b)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVH CDRの間隔に近い)配列番号:8、配列番号:9、および配列番号:10の配列から本質的になる3つのVH CDR。
(a)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVL CDRの間隔に近い)配列番号:13、配列番号:14、および配列番号:15の配列から本質的になる、3つのVL CDRならびに
(b)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVH CDRの間隔に近い)配列番号:18、配列番号:19、および配列番号:20の配列から本質的になる3つのVH CDR。
(a)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVL CDRの間隔に近い)配列番号:23、配列番号:24、および配列番号:25の配列から本質的になる、3つのVL CDRならびに
(b)単独で、CD38BP中で互いに近接近している(例えば、野生型の抗CD38抗体におけるVH CDRの間隔に近い)配列番号:28、配列番号:29、および配列番号:30の配列から本質的になる3つのVH CDR。
(1)CD38への高親和性結合;
(2)CD38からの低解離速度;
(3)CD38標的へのCD38結合の阻害もしくは遮断;
(4)CD38を発現するT細胞もしくはB細胞の削除;
(5)CD55/59陰性細胞もしくはCD55/59陽性細胞のいずれかの高レベルのCDCの誘導;
(6)CD38への結合による脂質ラフトへの移行;
(7)T細胞の寛容化;
(8)CD38を発現するT細胞またはB細胞の増殖の阻害;
(9)CD38の内在化;
(10)CD38酵素活性の阻害もしくは誘導;
(11)CD38誘導性シグナル伝達の阻害もしくは誘導;
(12)サイトカイン産生の阻害もしくは誘導;
(13)T細胞もしくはB細胞分化の阻害もしくは遮断;
(14)アポトーシスの誘導もしくはアポトーシスからの救出;
(15)NK細胞による溶解誘導の減衰もしくは強化;
(16)膵臓のβ細胞によるインスリン産生の誘導もしくは阻害;
(17)CD38を発現する腫瘍細胞を有する対象の長期の生存;および/または
(18)適当なエフェクター細胞と混合された場合のCD38標的のADCCの誘導である。本発明はまた、CD38への結合について、(抗体-003などの)配列番号:2のVL配列および配列番号:7のVH配列を有する抗体、または(抗体-005などの)配列番号:12のVL配列および配列番号:17のVH配列を有する抗体、または(抗体-024などの)配列番号:22のVL配列および配列番号:27のVH配列を有する抗体と競合し(競争的に阻害し)または交差競合する(すなわち、エピトープ結合を相対的に部分的に阻害する)それらの能力に関して特徴付けられるCD38BPを提供する。
(a)ある形態のCD38(例えば、「処理された」、「成熟した」、「未処理の」、「処理されない」、もしくは「未成熟な」CD38);
(b)ある形態の遊離のCD38(例えば、インビボ処理によって産生されたCD38断片);
(c)CD31などの、CD38と会合する別のペプチド、およびCD38から構成されたヘテロ二量体ペプチド;
(d)CD38ならびにcAMP、NAD+、および/もしくはcADPRなどの、1つもしくは複数の基質の複合体;
(e)CD31などの、可溶性リガンドと一緒に二量体化したCD38、CD31などの、可溶性リガンドと一緒に会合したCD38、および/もしくは可溶性リガンドと一緒のCD38の処理された二量体;または
(f)CD38の部分、
との間の結合における、少なくとも約15%などの、少なくとも約10%低下、または少なくとも約20%低下を意味する。1つより多いCD38に対して、および/または例えば、様々な被験断片に位置する十分に提示された線状のエピトープもしくはCD38だけでなく十分に大きいCD38断片でも提示される立体配座的エピトープの場合などの、CD38の特定の領域の抗体結合特性がその断片に保持されている文脈において、1つより多いCD38の部分に対して、競合がCD38BP間に存在し得る場合がある可能性もある。
I、再配置されていない重鎖および再配置された軽鎖免疫グロブリントランスジーンを含むトランスジェニック動物;
II、再配置されていない重鎖および再配置されていない軽鎖免疫グロブリントランスジーンを含むトランスジェニック動物;ならびに
III、再配置された重鎖および再配置されていない軽鎖免疫グロブリントランスジーンを含むトランスジェニック動物。
顕微鏡的多発性血管炎、チャーグ-ストラウス症候群、およびその他のANCA関連脈管炎、結節性多発性動脈炎、本質的クリオグロブリン血症性脈管炎、皮膚白血球破砕性血管炎、川崎病、高安動脈炎、巨細胞性動脈炎、ヘノッホ-シェーンライン紫斑病、原発性または孤立性脳血管炎、結節性紅斑、閉塞性血栓動脈炎、(溶血性尿毒症症候群を含む)血栓性血小板減少性紫斑病、ならびに(例えば、B型肝炎、C型肝炎、ヴァルデンストレームマクログロブリン血症、B細胞新生物形成、関節リウマチ、シェーグレン症候群、または全身性紅斑性狼瘡に続発する)皮膚白血球破砕性脈管炎を含む、続発性脈管炎などの、脈管炎およびその他の血管障害、;さらなる例は、結節性紅斑、アレルギー性脈管炎、脂肪織炎、ウェーバー-クリスチャン病、高グロブリン血症性紫斑病、およびバージャー病である;
接触性皮膚炎、線状IgA皮膚病、白斑、壊疽性膿皮症、後天性表皮水疱症、(瘢痕性類天疱瘡および水疱性類天疱瘡を含む)尋常性天疱瘡、(全身性脱毛症および完全脱毛症を含む)円形脱毛症、疱疹状皮膚炎、多形性紅斑、ならびに(血管神経性浮腫およびじんましん様血管炎を含む)慢性自己免疫性じんましんなどの、皮膚障害;
自己免疫性好中球減少症などの、免疫介在性血球減少症、および赤芽球癆;
CNS狼瘡、円盤状紅斑性狼瘡、CREST症候群、混合型結合組織疾患、多発性筋炎/皮膚筋炎、封入体筋炎、続発性アミロイドーシス、クリオグロブリン血症I型およびII型、線維筋痛、リン脂質抗体症候群、続発性血友病、再発性多発性軟骨炎、サルコイドーシス、スティフマン症候群、ならびにリウマチ熱などの、結合組織障害;さらなる例は好酸球筋膜炎である;
強直性脊椎炎、若年性慢性関節炎、成人性スチル病、およびSAPHO症候群などの、関節炎;さらなる例は、仙腸骨炎、反応性関節炎、スチル病、および痛風である;
再生不良性貧血、(寒冷凝集素症候群を含む)原発性溶血性貧血、CLLまたは全身性紅斑性狼瘡に続発する溶血性貧血;POEMS症候群、悪性貧血、およびヴァルデンストレーム高グロブリン血症性紫斑病などの、血液障害;さらなる例は、無顆粒球症、自己免疫性好中球減少症、フランクリン病、セリグマン病、γ重鎖疾患、胸腺腫およびリンパ腫に続発する新生物随伴症候群、ならびに胸腺腫およびリンパ腫に続発する新生物随伴症候群、ならびに第VIII因子阻害剤形成である;
多発性内分泌障害、などの内分泌障害、およびアジソン病;さらなる例は、自己免疫性低血糖症、自己免疫性甲状腺機能低下症、自己免疫性インスリン症候群、ドケルバン甲状腺炎、およびインスリン受容体抗体介在性インスリン抵抗性である;
セリアック病、ウィップル病、原発性胆汁性肝硬変、慢性活動性肝炎、および原発性硬化性胆管炎などの、肝-胃腸障害;さらなる例は、自己免疫性胃炎である;
急速進行性糸球体腎炎、連鎖球菌感染後腎炎、グッドパスチャー症候群、膜性糸球体腎炎、およびクリオグロブリン血症性腎炎などの、腎不全;さらなる例は、微小変化疾患である;
自己免疫性神経障害、多発単神経炎、ランバート-イートン筋無力症候群、シデナム舞踏病、脊髄癆、およびギラン-バレー症候群などの、神経障害;さらなる例は、脊髄症/熱帯性痙性不全対麻痺、重症筋無力症、急性炎症性脱髄性多発神経障害、および慢性炎症性脱髄性多発神経障害;多発性硬化症である;
COPD、線維化性肺胞炎、閉塞性細気管支炎、アレルギー性アスペルギルス症、嚢胞性線維症、レフラー症候群、心筋炎、および心膜炎などの、心臓および肺障害;さらなる例は、過敏性肺炎、および肺癌に続発する新生物随伴性症候群である;
気管支喘息および高IgE症候群などの、アレルギー性障害;さらなる例は、一過性黒内障である;
特発性脈絡網膜炎などの、眼科的障害;
(ハンズアンドソックス(hands-and-socks)症候群を含む)パルボウイルスB感染などの、感染性疾患;
再発性流産、再発性胎児消失、および子宮内発育遅延などの、産婦人科的障害;さらなる例は、婦人科新生物に続発する新生物随伴性症候群である;
精巣新生物に続発する新生物随伴性症候群などの、男性生殖器障害;ならびに
同種移植および異種移植拒絶、ならびに移植片対宿主疾患などの、移植に由来する障害。
圧痛関節数(TJC)および腫張関節数(SJC)における≧20%改善
ならびに以下の5つの評価のうち3つにおける≧20%改善:患者による疼痛評価(VAS)、患者による全般的評価(VAS)、医師による全般的評価(VAS)、患者の自己評価による障害(HAQ)、急性期反応物質(CRPまたはESR)。
実施例1
ルシフェラーゼをトランスフェクトした(ダウディ-luc)細胞の製造
(バーキットリンパ腫が起源である)ダウディ細胞の培養を、10% FCS(Optimum C241, Wisent Inc., St. Bruno, QC, Canada)、2mM L-グルタミン、100 IU/mlペニシリン、100mg/mlストレプトマイシン、1mMピルビン酸ナトリウム(全てGibco BRL, Life Technologies, Paisley, Scotlandから得られた)を補充したRPMI 1640培地で培養した。週に2回、培地を新たに補給した。トランスフェクションの前に、細胞を分割し、および生存率および最適な増殖を確実にするために1〜1.5×106細胞/mlで播種した。
8.2×106 CD38+ ダウディ細胞を、(10% dFCS, Gibco BRLを補充した)350μl RPMI中に取り上げ、およびエレクトロポレーションキュベット(Biorad, Hemel Hempstead, Herts, UK)に移した。その後、GTS(Aldevron, Fargo, ND, USA)からの40μg gWIZルシフェラーゼおよびピューロマイシン耐性を付与する、10μg pPurベクター(BD Biosciences, Alphen a/d Rijn, The Netherlands)を添加した。氷上で10分間細胞を静置した後、細胞をエレクトロポレーションした(250V, 950μF;Gene Pulser II, Biorad Laboratories GmbH, Munchen, Germany)。細胞を再び氷上で静置し、および(10% FCSを補充した)40ml RPMI中に取り上げた。その後、細胞を96ウェル組織培養プレートに全てプレーティングした(ウェル当たり100μl)。48時間後、ピューロマイシン(最終濃度:1μg/ml;Sigma-Aldrich Chemie BV, Zwijndrecht, The Netherlands)を添加した。ピューロマイシン耐性クローンを、24ウェル組織培養プレートでさらに増殖させた。
ルシフェラーゼアッセイ系(#E4030, Promega, Madison, WI, USA)を用いて、細胞のルシフェラーゼ活性を決定した。1×105細胞をエッペンドルフ遠心分離機で遠心分離し(13.500rpm, 1分)、およびペレットを100μl PBS中で洗浄した。遠心分離(13.500rpm, 1分)後、ペレットを20μlレポーター溶解緩衝剤(Promega)で溶解し、凍結および融解した。遠心分離(13,500rpm, 1分)後、20μl上清を廃棄し、および100μlルシフェラーゼアッセイ試薬を(特別のルミノメーターチューブ, Promegaに)添加した。ルミノメーター(LB9507, Berthold, Vilvoorde, Belgium)の中で発光を測定した(10秒)。
マウスの免疫およびハイブリドーマの作製
-003に関する免疫プロトコル
HCo12マウスを、2週間毎に20μg精製HA-CD38で免疫した。最初の免疫を、100μl完全フロイントアジュバント(CFA)と混合した、100μl PBSの存在下でi.p.で行なった。この最初の免疫の後、その後の精製HA-CD38によるブースト(×13)を、100μl不完全フロイントアジュバント(IFA)と混合した、100μl PBSの存在下で、s.c.およびi.p.を交互にして行なった。力価の発展後、マウスを、PBA中の20μg HA-CD38で、i.v.でブーストした。
HCo12マウスを、2週間毎にNIH-3T3-CD38トランスフェクト細胞と交互にして20μg精製HA-CD38で免疫した。最初の免疫を、100μl CFAと混合した、100μl PBS中の5×106細胞で、i.p.で行ない、HA-CD38による2回目およびそれに続く免疫を、100μl IFAと混合した、100μl PBSの存在下で、s.c.で行なった。トランスフェクト細胞によるそれに続く免疫を、200μl PBSの存在下で行なった。力価の発展後、マウスを、PBA中の20μg HA-CD38で、i.v.でブーストした。
マウス脾臓細胞をHCo12マウスから単離し、および標準的プロトコルに基づいてPEGでマウス骨髄腫細胞株に融合させた。その後、結果として得られるハイブリドーマを、ELISAによってヒト抗体産生について、ならびにFACS解析によるヒトCD38トランスフェクトNS/0細胞およびELISAによる組換えHA-CD38タンパク質結合を用いて、CD38特異性についてスクリーニングした。それぞれ、-003、-005、および-024という、ヒトモノクローナル抗CD38抗体を発現する3つのハイブリドーマ細胞株を選択した。
CD38によるNIH細胞のトランスフェクション
NIH-3T3-CD38細胞を産生するためのベクター(pclpuroCD38)をM. Glennie教授(Tenovus Research Laboratory, Southampton General Hospital, Southampton, UK)から得た。NIH-3T3細胞(DSMZ、ACC 59;150,000細胞/ウェル;0.5ml;96ウェル平底プレート、Greiner)を(グルコース[4.5g/l]、10% FCS、L-グルタミン、ピルビン酸Na;BioWhittakerを補充した)DMEM中で24時間培養した。その後、DNA(0.8μg)およびリポフェクトアミン(Invitrogen, Breda, The Netherlands)をDMEM中で希釈し、ならびに混合した(20分、室温)。その後、混合物(100μl)を各ウェルに添加し、およびインキュベートした(終夜、37℃)。
NIH-3T3-CD38細胞を(1ml PBS中で)洗浄し、およびトリプシン処理した(200μl、トリプシン-EDTA、BioWhittaker)。その後、1mlのDMEMを添加し、および混合物をピペッティングしてFACSチューブに入れた。遠心分離後(1200rpm、5分)、細胞をFACS緩衝剤(FB;PBS、0.05% BSA、0.02% NaN3)で洗浄し、および1ml FB中で再懸濁した。遠心分離後(1200rpm、5分)、上清を除去し、およびマウス抗ヒトCD38-PEを添加した(1/50希釈、Sanquin、Amsterdam、The Netherlands)。細胞をFB中で2回洗浄した後、フローサイトメトリーによる取得のために細胞をFB中で再懸濁した。
トリプシン処理後、細胞を(グルコース 4.5g/l、2mM L-グルタミン、およびピューロマイシン(2μg/ml) BioWhittakerを補充した)DMEM中のT25フラスコ(Greiner)に移した。ピューロマイシン含有培地にして2週間後、フローサイトメトリーによってピューロマイシン耐性細胞を安定なCD38発現について検査した。NIH-3T3-CD38選択細胞を限界希釈によってサブクローニングした。これらの細胞を拡大した後、15のNIH-3T3-CD38クローン全てをCD38発現についてスクリーニングした。CD38high NIH-3T3-CD38細胞を、使用するまで液体窒素(-80℃)で凍結した。
細胞を(グルコース(4.5g/l)、10% FCS、2mM L-グルタミン、ピルビン酸Na、ペニシリン、ストレプトマイシンを補充した)DMEM中で培養した。トリプシン/EDTAの使用によって週に2回、細胞を継代し、および1×106細胞/T75フラスコの濃度で播種した。CD38high NIH-3T3-CD38細胞を、使用するまで液体窒素(-80℃)で凍結した。
セファロース4B(Amersham Bioscience, Uppsala, Sweden)を抗CD38抗体(Serotec, Oxford, UK)と結合した。カラム(カラムチューブHR5/20を12cmベッド高まで詰めた、カラム容量2.4ml;最大流速0.5ml/分)を、少なくとも5カラム容量(CV)のPBSで平衡化した。試料を濾過し、およびカラムに充填した。シグナルがベースラインに戻るまで、PBSでカラムを洗浄した(およそ3CV)。pH 2の0.1Mグリシンで溶出を実行した。1%(v/v) 2M Tris-HCl、pH 9で溶出画分を中性化した。
ヒト抗CD38抗体を組織培養上清から精製した。最初に、上清を0.20μMデッドエンドフィルターに通して濾過した。その後、上清を5mlプロテインAカラム(rProtein A FF, Amersham Bioscience)に充填し、0.1Mクエン酸-NaOH、pH 3で溶出した。溶出物を2M Tris-HCl、pH 9で直ちに中性化し、および12.6mMリン酸ナトリウム、140mM NaCl、pH 7.4に対して終夜透析した(B. Braun, Oss, The Netherlands)。透析後、試料を0.20μMデッドエンドフィルターに通して滅菌濾過した。
本タンパク質は、CD38の細胞外ドメインの配列を含むDNA構築物を有する、His-CD38発現細胞の細胞培養上清に存在する。付加的なポリHisタグ配列が構築物に含まれ、かつ本タンパク質のN末端に存在する。このタグによって、固定化した金属親和性クロマトグラフィーによる精製が可能になる。この過程において、クロマトグラフィー樹脂上に固定されたキレート剤はCo2+によって電荷を帯びている。実際、6つのヒスチジンアミノ酸を含む配列は、Co2+に強く結合する。それゆえ、Hisタグ付きCD38タンパク質はそのようなカラムに強く結合し、一方培養上清中に存在するその他のタンパク質はカラムを通して流れ出ると考えられ、または洗い流されると考えられる。その後、強く結合した、Hisタグ付きCD38タンパク質を、HisのCo2+への結合と競合する、イミダゾールを含む緩衝剤で溶出する。十分なHis-CD38を精製したら、脱塩カラムによる緩衝剤交換によって、溶出物を本タンパク質から除去する。
CD38トランスフェクトCHO(CHO -CD38)細胞、ダウディ-luc細胞、および新鮮な多発性骨髄腫(MM)腫瘍細胞への-003、-005、および-024の結合
採取および計数の後、ダウディ-luc細胞、CD38をトランスフェクトしたCHO細胞、および対照CHO細胞をPBS中で再懸濁した(1×106細胞/ml)。その後、細胞を96ウェルV底プレート(100μl/ウェル)に置き、およびPBS-BSA(0.1% BSAおよび0.02%アジ化Naを補充したPBS)中で2回洗浄した。その後、PBS-BSA中の50μl抗体溶液を細胞に添加した(4℃、30分)。PBS-BSA中で3回洗浄した後、PBS-BSA中の50μl(1:400希釈)のウサギ抗ヒトIgG-FITC抗体溶液を添加した(4℃、暗所で30分)。細胞を3回洗浄し、およびCHO- CD38細胞およびダウディ-luc細胞へのCD38抗体の特異的結合をフローサイトメトリーで検出した。HuMab-KLH(本明細書の別の場所に記載された免疫プロトコルの使用によりGenmab B. V., Utrecht, The Netherlandsによって作製されたKLH(キーホールリンペットヘモシアニン)に対するヒトモノクローナル抗体)を対照として用いた。図1および2は、EC50は異なるが、-003、-005、および-024がCHO-CD38細胞およびダウディ-luc細胞に結合することを示している(表1)。対照CHO細胞への結合は観察されなかった(データは示さない)。
抗体依存性細胞介在性細胞毒性
ダウディ-luc細胞、新鮮な多発性骨髄腫腫瘍細胞、新鮮な形質細胞白血病腫瘍細胞、ならびにJK6LおよびAMO-1多発性骨髄腫細胞(5×106細胞)を、100μCi 51Cr(クロミウム-51;Amersham Biosciences, Europe GmbH, Roosendaal, The Netherlands)を添加した、RPMI++(10% cosmicウシ血清(HyClone, Logan, UT, USA)を補充したRPMI 1640培地)中に回収し、ならびに混合物を37℃水槽で1時間インキュベートした。細胞の洗浄(PBS中で2回、1500rpm、5分)後、細胞をRPMI++中で再懸濁し、およびトリパンブルー排出によってカウントした。細胞を1×105細胞/mlの濃度にした。
新鮮な末梢血単核細胞(健常ボランティア, UMC Utrecht, Utrecht, The Netherlands)を、製造元の取扱説明書に従って、フィコール(BioWhittaker;リンパ球分離培地、カタログ17-829E)によって40mlのヘパリン血液から単離した。RPMI++中での細胞の再懸濁の後、トリパンブルー排出によって細胞をカウントし、および1×107細胞/mlの濃度にした。
50μlの51Cr標識した標的細胞をピペッティングして96ウェルプレートに入れ、50μlの抗体を添加し、RPMI++で希釈した最終濃度10、1、0.1、0.01μg/ml)。細胞をインキュベートし(室温、15分)、および50μlエフェクター細胞を添加し、100:1というエフェクター 対 標的比を結果的にもたらした(最大溶解の決定のために、エフェクター細胞の代わりに、100μl 5%Triton-X100を添加し;自然溶解の決定のために、50μl標的細胞および100μl RPMI++を用いた)。細胞をスピンダウンし(500rpm、5分)、およびインキュベートした(37℃、5% CO2、4時間)。細胞をスピンダウンした後(1500rpm、5分)、100μlの上清を採取してマイクロニックチューブに入れ、およびγカウンターでカウントした。パーセンテージ特異的溶解を以下のように計算した:
(cpm試料 - cpm標的細胞のみ)/(cpm最大溶解 - cpm標的細胞のみ)、式中cpmはカウント毎分である。
ヒトボランティア(university Erlangen, Erlangen, Germany)由来のヒト血液をRPMI 1640中で2回希釈し、および血液細胞をフィコール上に重層した(リンパ球分離培地1077g/ml、710g、室温、20分;BioWhittaker, Cambrex Bio Science Vervier, Verviers, Belgium, カタログ. 17-829E, ロット番号. 0148 32)。末梢血単核細胞(MNC)を界面から回収し、洗浄し、および(全てBioWhittakerに由来する)10% FCS、2mM L-グルタミン、5U/mlペニシリン、50μg/mlストレプトマイシンを補充したRPMI 1640培地中で再懸濁し、そこに25mM HEPES(BioWhittaker)を添加した。
標的B細胞(T. Valerius博士, University of Erlangen, Erlangen, Germanyから得られた、新鮮な形質細胞白血病腫瘍細胞、JK6L、およびAMO-1 B細胞株)を20μCi 51Cr(Amersham Biosciences, Uppsala, Sweden)で2時間標識した。RPMI-10中での大規模な洗浄の後、細胞を1×105細胞/mlに合わせた。MNC(50μl)、感作抗体(50μl)、およびRPMI-10(50μl)を丸底マイクロタイタープレート(Greiner Bio-One GmbH, Frickenhausen, Germany)に添加した。新鮮な形質細胞白血病腫瘍細胞、JK6L、およびAMO-1細胞(50μl)を添加し、200μlの最終容量にすることによって、アッセイ法を開始した。40:1というエフェクター 対 標的比(E:T)を用いた。インキュベーション後(3時間、37℃)、遠心分離によってアッセイを停止し、および3通り由来の51Cr放出をシンチレーションカウンターでカウント毎分(cpm)で測定した。細胞性細胞毒性のパーセンテージを以下の公式を用いて計算した:
%特異的溶解=(実験cpm - 基礎cpm)/(最大cpm - 基礎cpm)×100
最大51Cr放出は過塩素酸(3%最終濃度)を標的に添加することにより決定し、ならびに基礎放出は感作抗体およびエフェクター細胞の非存在下で測定した。
補体依存的細胞毒性
ダウディ-luc細胞の採取および計数の後、細胞の生存率は≧90%であるべきである。洗浄(PBS)後、細胞をRPMI-B(1% BSAを補充したRPMI)中で2.0×106細胞/mlで再懸濁する。その後、細胞を96ウェル丸底プレートに1.0×105細胞/ウェル(50μl)で置く。その後、50μl抗体をウェルに添加する(0〜100μg/mlの間の最終濃度範囲(RPMI-B中で3倍希釈))。インキュベーション後(室温、15分)、11μlのプールしたヒト血清(18人の健常ドナーのプール)を各ウェルに添加した(37℃、45分)。ウェルを1回再懸濁し、および120μlをFACSチューブ(Greiner)に移した。その後、10μlヨウ化プロピジウム(PI;Sigma-Aldrich Chemie B. V.)をこの懸濁に添加した(10μg/ml溶液)。(PI陽性細胞に対応する)死細胞のパーセンテージの測定によってフローサイトメトリー(FACScalibur(商標), Becton Dickinson, San Diego, CA, USA)で溶解を検出した。
FACSを用いた交差遮断の検討
CHO-CD38細胞を過剰の非標識CD38特異的抗体とインキュベートした(4℃、15分)。その後、細胞をFITC標識CD38特異的抗体(濃度はEC90に近い、4℃、45分)とインキュベートした。PBS-BSAで細胞を2回洗浄した後、フローサイトメトリーで蛍光を測定した。図11は、非標識-003はFITC標識-003の結合を遮断するが、FITC標識-005の結合は遮断されないことを示している。また、非標識-005はFITC標識-005の結合を遮断するが、FITC標識-003の結合は遮断されない。それらは結合について競合しないので、-003および-005は異なるエピトープに結合する。
ELISAを用いた交差遮断の検討
可溶型ヒトCD38をELISAプレートの表面上にコーティングする。コーティングしたCD38を過剰の非標識CD38特異的抗体と約15分間インキュベートし、その後ビオチン化CD38特異的抗体を添加する(濃度はEC90に近い、室温、1時間)。PBS/Tweenで3回洗浄した後、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)コンジュゲートしたストレプトアビジンを添加し、および混合物を1時間室温でインキュベートする。複合体は、ABTS溶液の添加により検出することができ、およびHRPを介する基質変換は、OD 405nmでELISA読取機を用いて測定する。
サンドイッチELISAを用いた交差遮断の検討
CD38特異的抗体をELISAプレートの表面上にコーティングする。プレートに結合した抗体を流体相中で過剰のCD38特異的抗体の存在下でビオチン化可溶型CD38とインキュベートする。PBS/Tweenで洗浄した後、結合したビオチン化CD38を、1時間室温で、HRPコンジュゲートしたストレプトアビジンにより検出する。この複合体は、(PBS/Tweenで洗浄した後)ABTS溶液の添加により検出することができ、およびHRPを介する基質変換は、OD 405nmでELISA読取機を用いて測定する。
免疫組織化学によるヒト組織のパネルとの反応性およびカニクイザル組織との交差反応性
(H. Niessen博士, Free University Medical Center, Amsterdam, The Netherlandsから得られた)凍結ヒト組織由来切片およびサル組織(Inveresk Research, Glasgow, Scotland)を6μmで切り、および終夜風乾した。これらのクライオスタット切片をアセトン中で固定し(室温、10分)、および風乾した(およそ5分)。その後、内在性ペルオキシダーゼを遮断するために、切片を0.1% H2O2(pH 5.8;Sigma)を含む1×クエン酸/リン酸緩衝剤とインキュベートした。室温で20分後、切片をPBSおよび0.05% Tween-20(PBST、室温、5分;Riedel de-Haen, Germany)で2回洗浄した。その後、切片をアビジンとインキュベートし(室温、15分;DAKO, Glostrup, Denmark)、PBSTで2回洗浄し、および内在性ビオチンを遮断するためにビオチンとインキュベートした(室温、15分;DAKO)。切片をPBSTで2回洗浄した後、切片をPBST++(10%ヒト血清(NHS, CLB, Amsterdam, Netherlands)および10%正常ヤギ血清(NGS;DAKO)を補充したPBST)でプレインキュベートした(室温、20分)。プレインキュベーション血清を吸い取った後、切片を指示された濃度で2% PBST++中で希釈したFITC標識した1次抗体とインキュベートした(室温、60分)。その後、切片を2% PBST++中でウサギ抗FITC(1:1000;DAKO)とインキュベートした(室温、30分)。切片をPBSTで洗浄した後、切片を2% PBST++中でヤギ抗ウサギビオチン(1:400;DAKO)とインキュベートした(室温、30分)。その後、切片を洗浄し、および2% PBST++中でSABC-HRP(1:100;DAKO)とインキュベートした(室温、30分)。切片をPBST中で2回洗浄した後、それらをアミノエチルカルバゾル(AEC)現像溶液(50mM酢酸緩衝剤、pH 4.9、0.01% H2O2;Riedel-de-Haen)とインキュベートした(室温、10分)。最後に、切片をミリポアH2O中(5分)で洗浄し、およびヘマトキシリン(DAKO)で対比染色した。グリセロールの使用(37℃)によって、切片をカバースリップで固定し、および光学顕微鏡(Axiovision-2;Zeiss, Thornwood, NY, USA)で検討した。
フローサイトメトリーによるカニクイザルおよびアカゲザル末梢血単核細胞(PBMC)との交差反応性
4.5mlショック緩衝剤(1.7mM NH4CL、1mM EDTA)、40ml H2O、および450μl 10% KHCO3を添加することによって、5mlのカニクイザル末梢血(Inveresk Research)を溶解した。溶血後、細胞を遠心分離し(1200rmp、10分)、およびPBS中で3回洗浄した。トリパンブルーで細胞をカウントした後、細胞をPBS-BSA中で再懸濁した(1×106細胞/ml)。
内在化実験
CHO-CD38細胞を飽和濃度のFITC標識CD38特異的抗体で染色した(氷上、30分)。(10% FCSを補充したRPMI 1640中での)細胞の洗浄後、一方の細胞プールを内在化させるために37℃まで温め、および他方のプールを氷上に放置した。数分の間隔(0〜120分)で、細胞アリコートを取り、および氷冷PBS-BSAに移して内在化を停止させた。試料をPBS-BSAで2回洗浄した後、EtBr(PBS-BSAで希釈した、最終濃度2mg/ml)を試料に添加し、膜に結合したFITCをクエンチングさせた。蛍光をフローサイトメトリーで測定した。
インビボSCIDルシフェラーゼ実験
このモデルでは、腫瘍細胞にホタルルシフェラーゼをトランスフェクトする。マウスへのルシフェリン(Molecular Probes, Leiden, The Netherlands)の投与により、高感度CCDカメラを用いた生物発光画像撮影によって標識細胞をインビボで検出することができ、Wetterwald et al., American Journal of Pathology 160(3), 1143-1153(2002)を参照されたい。
アポトーシス
製造元の取扱説明書に従って、アポトーシスアッセイ法を実行した(アネキシン-V-アポトーシスキット, BD Biosciences, Alphen a.d. Rijn, Netherlands)。手短に述べると、CD38 mAbを、5μg/ml -003または-005または抗CD20抗体の濃度で、単独でまたは交差遮断rb-抗hIgG(50μg/ml)の存在下で、2.5×105細胞(0.5ml RPMI++を含む24ウェルプレート中の、ルシフェラーゼトランスフェクトダウディ細胞)に添加した。
RA-SCIDマウスモデルにおける組織移植片B細胞に対する-005の効果
滑膜組織の移植
Charles River Laboratories Nederland(Maastricht, the Netherlands)から購入した、系統C. B.-17/IcrCrl-SCID-bg、オス/メス、4〜12週である、SCIDマウスを標準的条件の温度および照明の下でIVCケージの中で飼い、ならびに不断で実験室食および水を与えた。移植前に、1:1の比のケタミン(NIMATEK, EuroVet)およびキシラジン(Rompun, Bayer)の腹腔内注射によって、マウス(0日目、各実験群において3匹のマウス)を麻酔した。手術バサミを用いて皮膚の小さい切開を作った。関節交換手術を行なっている関節リウマチを有する患者由来の炎症を起こした滑膜組織を、マウスの各々の脇腹に6つの小さい断片(合計2〜3mm3)の塊として皮下に移植した。傷はPermacolシアノアクリレート接着剤を用いて閉じた。実験の1日目に、炎症を起こした滑膜移植物中のB細胞を調べるために、残りの滑膜組織を解析した。実験の8日目に200μlの容量で、-005(12mg/kg)または対照抗体(抗KLH、30mg/kg)を(i.v.)注射した。実験の最後(14日目)に、マウスをCO2吸入によって屠殺し、および滑膜移植片を外植した。1つの移植片をさらなる免疫組織化学的解析用にOCT化合物(TissueTek, Sacura Finetek Europe)中で即座に凍結し、および別の移植片をさらなるRNA解析用に液体窒素中での浸漬によって凍結した。
LEICA CM1900クライオスタットを用いてSuperFrost(Menzel GmbH, Braunschweig)スライド上の5μM凍結切片を調製し、および−80℃で保存した。融解した切片をアセトン中で10分間固定し、室温で乾燥させ、およびPBS中で3×5分洗浄した。全ての工程を室温で行なった。20分間、0.3%過酸化水素および0.1%アジ化ナトリウムを補充したPBSとのインキュベーションによって、内在性ペルオキシダーゼ活性を遮断した。スライドをPBS中で3×5分洗浄し、およびPBS/1% BSA中の10%正常ヒト血清(NHS)/10%正常ウサギ血清(NRbS)と30分間インキュベートした。次に、1% BSA/10% NHS/10% NRbSを補充したPBS中で希釈した1次抗体(マウスmAb)を60分間インキュベートした。PBS中での3×2分の洗浄後、(1% BSA/10% NHS/10% NRbSを補充した)PBS中で1:50に希釈したHRPコンジュゲート(ヤギ抗マウスIg-HRP;DAKO P0447)を30分間添加した。ペルオキシダーゼシグナルは、TSA(商標)ビオチン系(Perkin Elmer Life Sciences, NEL700)を用いて増強した。スライドをPBS中で3×2分洗浄し、および増幅緩衝剤中で1:1600に希釈したビオチニルチラミドと30分間インキュベートした。PBS中での3×2分の洗浄後、(1% BSAを補充した)PBS中で1:400に希釈したストレプトアビジン-HRPを30分間添加した。スライドをPBS中で3×2分洗浄し、およびDAB溶液(DAKO Cytomation K3465)と5分間インキュベートした。呈色反応は蒸留水で停止させた。最後に、スライドをヘマトキシリン(MERCK)で対比染色し、流水で洗浄し、ならびにカイザーのグリセリンおよびカバースリップで覆った。
染色した滑膜組織異種移植片の得点化は、2人の熟練の人によって盲検様式で行なわれた。最初に最も強い切片を一連の切片より選択し、およびこの参照切片に最高得点8を与えた。その後、その他の切片における染色強度を、参照切片と比べて、0〜8の等級で得点化した。
染色強度の得点化をクラスカル-ワリス一方向ANOVAによって解析し、続いてGraph Pad Prism第4.01版(Graph Pad Software Inc., San Diego, CA, USA)を用いてダンの多重比較検定を行なった。
CD38に対するヒト抗体のコーディング配列のシークエンシング
RNA調製
製造元のプロトコルに従って、RNeasyキット(Qiagen, Westburg, Leusden, Netherlands)で、5×106細胞の抗体-003、-005、および-024をそれぞれ発現するハイブリドーマ細胞株から全RNAを調製した。
製造元のプロトコルに従って、SMART RACE cDNA増幅キット(Clontech)を用いて、100ng全RNAからRNAの5'RACE相補的DNA(cDNA)を調製した。
反応産物を1% TAEアガロースゲル上での電気泳動によって分離し、およびエチジウムブロマイドで染色した。正確なサイズのバンドをゲルから切り出し、およびQiaexIIゲル抽出キット(Qiagen, カタログ番号20021)を用いて、DNAをアガロースから単離した。
それぞれ20(VH-003)、16(VL-003)、15(VL-005)、ならびに6(VHおよびVL-024)の白コロニーを拾い、プラスミドを単離し、ならびにM13リバースプライマーでシークエンシングした後、AGOWA(Berlin, Germany)によってV-領域-003および-024、ならびに-005 VL領域を配列決定した。-005 VH領域は、プライマーHCseq5を用いることによって直接PCR産物で配列決定した。Vector NTI改良型一式(Invitrogen)を用いて配列を解析した。
pConG1f0.4(Lonza Biologics, Slough, UK)へのクローニングのための好適な制限部位(HindIIIおよびApaI)ならびに理想的Kozak配列(GCCGCCACC)を導入した、プライマーVH3003-003forおよびRACEVHApaIを用いて、-003のVH領域を含むpGemTプラスミドクローンからPCRで-003のVHコード領域を増幅した。pConG1f0.4ベクターは、ヒトIgG1の重鎖定常領域を含む。HindIIIおよびApaIを用いて、VH PCR断片をpConG1f0.4ベクターに、インフレームで、挿入した。構築物を配列解析によって調べた。
安定細胞株の作製のために、標準的クローニング技術によって、-003または-005の重鎖および軽鎖ベクターを1つの2重遺伝子ベクター中で組み合わせた。
部位指向性突然変異生成を用いたエピトープマッピング
オリゴヌクレオチドは、Isogen Bioscience(Maarssen, The Netherlands)によって合成および定量化された。プライマーを100pmol/μlまでH2O中で溶解し、および−20℃で保存した。全てのPCRおよびシークエンシングプライマーのまとめを表6に示す。PCRのために、製造元の取扱説明書に従って、PfuTurbo(登録商標)Hotstart DNAポリメラーゼ(Stratagene, Amesterdam, The Netherlands)を用いた。各反応混合物には、20μlの総容量の(ポリメラーゼを補充した)PCR反応緩衝剤中に、200μM混合dNTP(Roche Diagnostics, Almere, The Netherlands)、10pmolのフォワードおよびリバース両方のプライマー、100ngのゲノムDNAまたは1 ngのプラスミドDNA、ならびに1ユニットのPfuTurbo(登録商標)Hotstart DNAポリメラーゼが含まれた。32サイクルプログラムを用いてTGradient Thermocycler 96(Whatman Biometrta, Goettingen, Germany)によってPCR反応を実行した:95℃で2分間の変性;30サイクルの95℃ 30秒間、60〜70℃勾配(または別の特定のアニーリング温度) 30秒間、および72℃ 3分間;72℃で10分間の最終伸長。適当な場合、さらなる解析または処理まで、PCR混合物を4℃で保存した。
プライマーcd38forhaおよびcd38exrevを用いて、(M. Glennie教授, Tenovus Research Laboratory, Southampton General Hospital, Southampton, UKから得られた)プラスミドpClpuroCD38からヒトCD38の細胞外ドメインを増幅した。このPCR反応によって、HA-タグが導入された。このPCR産物を、プライマーSPHMM38exおよびcd38exrevによる第2のPCR反応のための鋳型として用いた。このPCR反応によって、最適発現のためのシグナルペプチドSPHMM、制限部位、および理想的Kozak配列(GCCGCCACC)が導入された。精製後、このPCR断片を発現ベクターpEE13.4(Lonza Biologics)にクローニングし、および完全コード配列を、プライマーpConKseq1、pEE13.4seqrev、cd38seq1for、およびcd38seq2rev(表6)によるシークエンシングによって確認した。この構築物をpEE13.4HACD38と名付けた。
位置237でTがAに突然変異し(T237A、配列番号:32)、位置272でQがRに突然変異し(Q272R、配列番号:33)、位置274でSがFに突然変異している(S274F、配列番号:34)、huCD38の3つの単一突然変異体タンパク質を構築した。製造元の取扱説明書に従って、QuickChange II XL部位指向性突然変異生成キット(Stratagene, Amesterdam, The Netherlands)を用いて、部位指向性突然変異生成を行なった。この方法には、成功している突然変異生成をスクリーニングするためのサイレントの余分な制限部位の導入または制限部位の損失が含まれる(T237A突然変異体については余分なXbaI部位、Q272R突然変異体については余分なBcgI、およびS274F突然変異体についてはSsp1部位の損失)。簡潔に言えば、5μl 10×反応緩衝剤、1μlオリゴヌクレオチドHACD38T237Afor2、HACD38Q272Rfor、またはHACD38S274Ffor(100 pmol/μl)、1μlオリゴヌクレオチドHACD38T237Arev2、HACD38Q272Rrev、またはHACD38S274Frev(100 pmol/μl)、1μl dNTP混合物、3μlQuick溶液、1μlプラスミドpEE13.4HACD38(50 ng/μl)、および1μl PfuUltra HF DNAポリメラーゼを、50μlの総容量中で混合し、ならびに18サイクルプログラムを用いてTGradient Thermocycler 96(Whatman Biometrta, Goettingen, Germany;製品# 050-801)によって増幅した:95℃で1分間の変性;18サイクルの95℃ 50秒間、60℃ 50秒間、および68℃ 10分間。さらなる処理まで、PCR混合物を4℃で保存した。次に、PCR混合物を37℃で60分間、1μl DpnIとインキュベートし、pEE13.4HACD38 WTベクターを消化し、およびさらなる処理まで、4℃で保存した。反応混合物を5μl 3M NaAcおよび125μlエタノールで沈殿させ、−20℃で20分間インキュベートし、および14000×gで4℃で20分間スピンダウンした。DNAペレットを70%エタノールで洗浄し、乾燥させ、および4μl水で溶解した。合計4μl反応容量を、製造元の取扱説明書(Invitrogen)に従って、1ショットTop10 DH5αT1Rコンピテント大腸菌細胞(Invitrogen, Breda, The Netherlands)に形質転換した。次に、50μg/mlアンピシリンを含むルリア-ベルターニ(LB)寒天プレート上に、細胞をプレーティングした。細菌コロニーが明白になるまで、37℃で16〜18時間、インキュベートした。プライマーpConG1seq1およびpEE13.4seqrev2(表5)を用いたコロニーPCRによってコロニーをスクリーニングし、および関連する制限酵素で消化して、突然変異原性オリゴヌクレオチドの取り込みをスクリーニングした。各突然変異体について2つの陽性クローンが増殖し、およびプラスミドDNAが単離された。プライマーcd38seq1for、pConG1seq1、およびpEE13.4seqrev2を用いて完全なHACD38コード配列を決定し、突然変異の存在およびさらなる望まない突然変異の不在を確認した。
配列解析のために、プラスミドDNA試料をAGOWA(Berlin, Germany)に送った。VectorNTI改良ソフトウェア(Infomax, Oxford, UK)を用いて、配列を解析した。
フリースタイル(商標)293-F(懸濁増殖および化学的に規定されたスリースタイル培地に適応したHEK-293サブクローン、(HEK-293F))細胞をInvtrogenから得、および293fectin(Invtrogen)を用いて、製造元のプロトコルに従って、pEE13.4HACD38ならびに突然変異T237A、Q272R、およびS274Fを持つ3つの構築物をトランスフェクトした。トランスフェクト細胞の培養上清を抗CD38結合検討のためのELISAで用いた。
ELISAプレート(Greiner, #655092)を1μg抗HA抗体(Sigma, #H-9658)により4℃で終夜コーティングし、その後2%ニワトリ血清でブロッキングした。トランスフェクトHEK293F細胞の培養上清を希釈し、ELISAプレートに適用し、および室温で1時間インキュベートした。洗浄後、連続希釈のHuMab -003および-005を添加し、および室温で1時間インキュベートした。結合した抗体をHRPコンジュゲートしたヤギ抗ヒトIgG抗体で検出した。アッセイをABTS(Roche, # 1112597)で現像し、および分光光度計を用いて405nmで吸収を測定した。
PBMCの増殖の誘導
本質的にAusiello et al., Tissue antigen 56, 538-547(2000)に記載されたようなアッセイ法において、-003、-005、および-024を試験した。簡潔に言えば、200μl RPMI++中の抗体(最終濃度:1.1 - 3.3‐10 - 30μg/ml)の存在下で、平底96ウェルプレートにおいて1×105細胞/ウェルで健常ドナー由来PBMCを培養した。IL-15(333ng/mlで;Amgen Inc., Thousand Oaks, CA, USA)による細胞の刺激を陽性対照として用いた。37℃での4日インキュベーション後、30μl 3H-チミジン(16.7μCi/ml)を添加し、および培養を終夜続けた。製造元の取扱説明書に従って、Packard Cobraγカウンター(Packard Instruments, Meriden, DT, USA)を用いて、3H-チミジン取り込みを評価した。10人のドナーから得られたPBMCの平均cpm(±SEM)として、データを示す。本結果は、-003および-005がPBMCの有意な増殖を誘導しないことを示している(図24A)。また、-024もPBMCの有意な増殖を誘導しなかった(データは示さない)。
IL-6の誘導
Ausiello et al., Tissue antigen 56, 538-547(2000)に記載されたようなアッセイ法において、-003、-005、および-024を試験した。簡潔に言えば、500μl RPMI++中の20μg/mlの抗体および10 ng/ml LPS(Sigma-Aldrich Chemie, Zwijndrecht, The Netherlands)の存在下で、48ウェルプレートにおいて1×106細胞/ウェルでPBMCを培養した。37℃での終夜インキュベーション後、上清を採集し、および−20℃で保存した。製造元の取扱説明書に従って、ELISA(IL-6 ELISAキット, U-CyTech Biosciences, Utrecht, The Netherlands)によって、IL-6濃度を評価した。7人のドナーからのpg/ml(±SEM)での平均濃度としてデータを示す。本結果は、-003および-005が有意なIL-6レベルの放出を誘導しないことを示している(図24B)。また、-024も有意なIL-6レベルの放出を誘導しなかった(データは示さない)。
IFN-γの放出の誘導
Ausiello et al., Tissue antigen 56, 538-547(2000)に記載されたようなアッセイ法において、-003、-005、および-024を試験した。簡潔に述べると、500μl RPMI++中の20μgl/mlの抗体および1μg/ml OKT-3(Sanquin, Amsterdam, The Netherlands)の存在下で、48ウェルプレートにおいて1×106細胞/ウェルでPBMCを培養した。37℃での終夜インキュベーション後、上清を採集し、および−20℃で保存した。製造元の取扱説明書に従って、ELISA(IFN-γ ELISAキット, U-CyTech Biosciences, Utrecht, The Netherlands)によって、IFN-γ濃度を評価した。9人のドナーからのpg/ml(±SEM)での平均濃度としてデータを示す。本結果は、-003および-005が検出可能なIFN-γレベルの放出を誘導しないことを示している(図24C)。また、-024も有意なIFN-γレベルの放出を誘導しなかった(データは示さない)。
組換えCD38への-003および-005の結合の親和性
表面プラズモン共鳴を用いて、CD38への-003および-005の結合を試験した。簡潔に述べると、精製抗体を、アミン結合を介してCM-5センサーチップ(Biacore, Uppsala, Sweden)上に固定化した。HAタグ付きCD38(実施例3参照)を一面に流し、およびBiacore 3000(Biacore)を用いて、チップの表面における屈折指数の変化によって、mAbへの抗原の結合を検出した。-003(表7)および-005(表8)についての会合および速度定数は、3回の実験の平均±SDとして、下にまとめられ、および-003および-005ほ両方がCD38に対する高い親和性を有することを示している。
エピトープマッピング
PEPSCAN法を用いたエピトープマッピング
公知の手順(Geysen et al. 1984. Use of peptide synthesis to probe viral antigens for epitopes to a resolution of a single amino acid. Proc Natl Acad Sci USA 81:3998;Slootstra et al. 1996. Structural aspects of antibody-antigen interaction revealed through small random peptide libraries. Mol Divers 1:87;Puijk et al. 2001. Segment synthesis. In PCT, The Netherlands, 1頁)に従って、ヒトCD38のC末端の138アミノ酸を覆う重なり合う20mer線状ペプチドおよび15merループ状ペプチドを合成した。さらに、C末端の配列に基づいて、領域
、領域
、および領域
を覆う異なるサイズの単一ループ状のペプチドを作った。加えて、SKRNIQFSCKNIYRおよびEKVQTLEAWVIHGGから構成される2重ループ状領域を構築するために、余分の組を設計した。ネイティブのシステインをアラニンで置き換えた。クレジットカード形式の小型PEPSCANカードを用いたELISA法において、ペプチドをスクリーニングした。
ペプチドを標準的なFmoc化学を用いて合成し、およびスカベンジャーを含むTFAを用いて脱保護した。その後、脱保護ペプチドを、アセトニトリル(1:1[容量/容量])を補充した、重炭酸アンモニウム(20mM、pH 7.9)中の2,6-ビス(ブロモメチル)ピリジンまたは2,4,6-トリス(ブロモメチル)メシチレンの0.5mM溶液を用いて、マイクロアレイ上で反応させた。溶液中で完全に覆いつつ、マイクロアレイを溶液中で30〜60分間穏やかに振盪した。最後に、マイクロアレイを過剰のMillipore H2Oで激しく洗浄し、および1%ドデシル硫酸ナトリウム、0.1% β-メルカプトエタノールを含む破壊緩衝剤を含むPBS(pH 7.2)中で、70℃で30分間、超音波処理し、続いてmillipore H2O中でもう45分間超音波処理した。
共有結合したペプチドを含む、455ウェルクレジットカード形式ポリエチレンカードを(例えば、5%ウマ血清[容量/容量]および5%オボアルブミン[重量/容量]を含むブロッキング溶液中で1:1000に希釈した)血清とインキュベートした(4℃、終夜)。洗浄後、ペプチドをウサギ抗ヒトIgペルオキシダーゼ(1:1000希釈、25℃、1時間)とインキュベートし、ならびに洗浄後ペルオキシダーゼ基質(2,2'-アジノ(azino)-ジ-3-エチルベンズチアゾリンスルホネートおよび2μl/ml 3% H2O2)を添加した。1時間後、CCDカメラおよび画像処理系によって、色現像を測定した。セットアップは、55mmレンズ(ソニーCCDビデオカメラXC-77RR、Niconマイクロnikkor 55mm f/2.8レンズ)付きのCCD-カメラ、カメラアダプター(ソニーカメラアダプターDC-77RR)、および画像処理ソフトウェアパッケージOptimas、第6.5版(Media Cybernetics, Silver Spring, MD 20910, U.S.A.;ペティアムIIコンピュータ系によるOptimas運転)からなる。
個々のアミノ酸をヒトCD38アミノ酸配列における最小の固有の単位を表すジペプチドモチーフによって同定した。試験した1164ペプチドの各々に存在する全てのジペプチドモチーフに、それぞれのペプチド全体について得られたELISA値を与えた。ジペプチドモチーフを強い結合から弱い結合まで順位付けるために、各々の個々のモチーフについて得られたELISA値を、1164全ての試験された線状ペプチドおよびループ状ペプチドからの平均ELISA値で割ることによって相対的シグナルを計算し、ならびにこれらを減少している値について分別した。このやり方においては、立体配座的エピトープに対するアミノ酸寄与を考慮した。試験したmAbの各々について、2.5を上回る得点のジペプチドモチーフ(すわなち、これらのモチーフを含むペプチドのELISA値は、1164ペプチド全てで得られたペプチドの平均ELISA値の少なくとも2.5倍である)を全て選択した。データをデコンボリュートし、得点化系によって線状CD38配列上に表された単一アミノ酸寄与を示した。線状CD38配列に沿ってウォーキングすることにより、および参照点として固有のジペプチド単位を用いることにより、CD38アミノ酸がこの組の高得点ペプチドに存在する度に、1点を与えた。
酵素活性
本質的にGraeff et al., J. Biol. Chem. 269, 30260-30267(1994)に記載されたようなアッセイ法において、ヒトCD38の酵素活性を測定した。簡潔に述べると、基質NGD+(80μM)を、20mM Tris-HCl、pH 7.0を含む緩衝剤中でCD38(0.6μg/mlヒトCD38のHisタグ付き細胞外ドメイン、His-CD38の精製に関しては実施例3参照)とインキュベートした。cGDPRの産生を410nmの放射波長(300nmにおける励起)で分光光度学的にモニターすることができる。この実施例においては、340±60nmの励起フィルターおよび430±8nmの放射フィルターを用いた。
-003および-005とMorphosys抗体3079との比較
抗体-003および-005をMorphosys抗体3079(TH-3079)と機能的に比較した。Morphosys抗体TH-3079のクローニングおよび発現のための方法は実施例16に記載されている。CDCのための方法は実施例6に記載されている。ADCCのための方法は実施例5に記載されている。図26Aは、-005および-003およびTH-3079が、CDCを介するCD38トランスフェクトCHO細胞の溶解を誘導し、同様の最大溶解を有することを示している。EC50値を比較した場合、-005抗体は、CHO-CD38細胞の溶解を誘導する点でTH3079よりも良く、2倍低いEC50を有する(表10参照)。
配列番号:1は抗体-003のVL領域のヌクレオチド配列である。
配列番号:2は抗体-003のVL領域のアミノ酸配列である。
配列番号:3は配列番号:2のアミノ酸24〜34を含む抗体-003のVL CDR1領域のアミノ酸配列である。
配列番号:4は配列番号:2のアミノ酸50〜56を含む抗体-003のVL CDR2領域のアミノ酸配列である。
配列番号:5は配列番号:2のアミノ酸89〜97を含む抗体-003のVL CDR3領域のアミノ酸配列である。
配列番号:6は抗体-003のVH領域のヌクレオチド配列である。
配列番号:7は抗体-003のVH領域のアミノ酸配列である。
配列番号:8は配列番号:7のアミノ酸31〜35を含む抗体-003のVH CDR1領域のアミノ酸配列である。
配列番号:9は配列番号:7のアミノ酸50〜66を含む抗体-003のVH CDR2領域のアミノ酸配列である。
配列番号:10は配列番号:7のアミノ酸99〜109を含む抗体-003のVH CDR3領域のアミノ酸配列である。
配列番号:11は抗体-005のVL領域のヌクレオチド配列である。
配列番号:12は抗体-005のVL領域のアミノ酸配列である。
配列番号:13は配列番号:12のアミノ酸24〜34を含む抗体-005のVL CDR1領域のアミノ酸配列である。
配列番号:14は配列番号:12のアミノ酸50〜56を含む抗体-005のVL CDR2領域のアミノ酸配列である。
配列番号:15は配列番号:12のアミノ酸89〜97を含む抗体-005のVL CDR3領域のアミノ酸配列である。
配列番号:16は抗体-005のVH領域のヌクレオチド配列である。
配列番号:17は抗体-005のVH領域のアミノ酸配列である。
配列番号:18は配列番号:17のアミノ酸31〜35を含む抗体-005のVH CDR1領域のアミノ酸配列である。
配列番号:19は配列番号:17のアミノ酸50〜66を含む抗体-005のVH CDR2領域のアミノ酸配列である。
配列番号:20は配列番号:17のアミノ酸99〜111を含む抗体-005のVH CDR3領域のアミノ酸配列である。
配列番号:21は抗体-024のVL領域のヌクレオチド配列である。
配列番号:22は抗体-024のVL領域のアミノ酸配列である。
配列番号:23は配列番号:22のアミノ酸24〜34を含む抗体-024のVL CDR1領域のアミノ酸配列である。
配列番号:24は配列番号:22のアミノ酸50〜56を含む抗体-024のVL CDR2領域のアミノ酸配列である。
配列番号:25は配列番号:22のアミノ酸89〜97を含む抗体-024のVL CDR3領域のアミノ酸配列である。
配列番号:26は抗体-024のVH領域のヌクレオチド配列である。
配列番号:27は抗体-024のVH領域のアミノ酸配列である。
配列番号:28は配列番号:27のアミノ酸31〜35を含む抗体-024のVH CDR1領域のアミノ酸配列である。
配列番号:29は配列番号:27のアミノ酸50〜66を含む抗体-024のVH CDR2領域のアミノ酸配列である。
配列番号:30は配列番号:27のアミノ酸99〜111を含む抗体-024のVH CDR3領域のアミノ酸配列である。
配列番号:31はヒトCD38の配列である。
配列番号:32は、位置237のスレオニン残基がアラニン残基で置換されている、突然変異体ヒトCD38の配列である。
配列番号:33は、位置272のグルタミン残基がアルギニン残基で置換されている、突然変異体ヒトCD38の配列である。
配列番号:34は、位置274のセリン残基がフェニルアラニン残基で置換されている、突然変異体ヒトCD38の配列である。
Claims (48)
- 以下によってコードされるヒトCD38に結合する抗体:
それぞれ、配列番号:11および配列番号:16に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸。 - 軽鎖可変領域が配列番号:13に示されたような配列を有するVL CDR1、配列番号:14に示されたような配列を有するVL CDR2、および配列番号:15に示されたような配列を有するVL CDR3を含み、ならびに重鎖可変領域が配列番号:18に示されたような配列を有するVH CDR1、配列番号:19に示されたような配列を有するVH CDR2、および配列番号:20に示されたような配列を有するVH CDR3を含む、ヒト軽鎖可変領域ならびにヒト重鎖可変領域を含む、ヒトCD38に結合する抗体。
- 配列番号:12に示されたようなアミノ酸配列を有するVL領域を含む、請求項2記載の抗体。
- 配列番号:12による配列に対する少なくとも95%のアミノ酸配列同一性などの、少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するVL領域を含む、請求項2記載の抗体。
- 前記VL領域が、配列番号:12と比較して保存的配列改変を含む、請求項4記載の抗体。
- 配列番号:17のVH CDR1〜VH CDR3領域にわたるアミノ酸配列を含むVH領域を含む、請求項2記載の抗体。
- 配列番号:17に示されたような配列に対する、または配列番号:17のVH CDR1〜VH CDR3にわたる領域に対する少なくとも95%のアミノ酸配列同一性などの、少なくとも90%のアミノ酸配列同一性を有するVH領域を含む、請求項2記載の抗体。
- 前記VH領域が、配列番号:17と比較して保存的配列改変を含む、請求項7記載の抗体。
- 配列番号:17に示されたような配列と比較して、または配列番号:17のVH CDR1〜VH CDR3にわたる領域と比較して、1〜3のアミノ酸置換、欠失、または付加などの、1〜5のアミノ酸置換、欠失、または付加を有するVH領域を含む、請求項2記載の抗体。
- 配列番号:17に示されたようなアミノ酸配列を有するV H 領域を含む、請求項2記載の抗体。
- 配列番号:12に示されたようなアミノ酸配列を有するVL領域、および配列番号:17に示されたようなアミノ酸配列を有するVH領域を含む、ヒトCD38に結合する抗体。
- それが、IgG1抗体、好ましくはIgG1、κ抗体、またはIgM抗体、好ましくはIgM、κ抗体などの、全長IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgD、IgA、IgE、またはIgM抗体であるという点で特徴付けられる、請求項1〜11のいずれか一項記載の抗体。
- 真核細胞においてグリコシル化されている、請求項1〜12のいずれか一項記載の抗体。
- 抗体断片または単鎖抗体である、請求項1〜12のいずれか一項記載の抗体。
- 放射性同位元素を付着させるためのキレート剤リンカーをさらに含む、請求項1〜14のいずれか一項記載の抗体。
- 実質的に単離された形態にある、請求項1〜15のいずれか一項記載の抗体。
- 請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体をコードする単離された核酸。
- 請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体をコードする核酸配列を含む発現ベクター。
- 以下を含む発現ベクター
配列番号:11のVLヌクレオチド配列および配列番号:16のVHヌクレオチド配列。 - ヒト抗体の軽鎖の定常領域、重鎖の定常領域、または軽鎖および重鎖両方の定常領域をコードするヌクレオチド配列をさらに含む、請求項19記載の発現ベクター。
- ヒト抗体の軽鎖の定常領域、重鎖の定常領域、または軽鎖および重鎖両方の定常領域をコードするヌクレオチド配列がIgG1抗体をコードする、請求項20記載の発現ベクター。
- 以下を含む、ヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸によってコードされるヒトモノクローナル抗CD38抗体を産生するトランスフェクトーマ:
それぞれ、配列番号:11および配列番号:16に示されたようなそれらの可変領域におけるヌクレオチド配列を含むヒト軽鎖核酸およびヒト重鎖核酸。 - 以下を含むヒト重鎖可変領域およびヒト軽鎖可変領域を有するヒトモノクローナル抗CD38抗体を産生するトランスフェクトーマ:
配列番号:12に示されたようなヒト軽鎖可変アミノ酸配列、および配列番号:17に示されたようなヒト重鎖可変アミノ酸配列。 - 請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体を産生する真核宿主細胞または原核宿主細胞。
- 請求項18〜21のいずれか一項記載の発現ベクターを含む真核宿主細胞または原核宿主細胞。
- 検出可能な量の請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体を産生する、ヒト重鎖およびヒト軽鎖をコードする核酸を含むトランスジェニック非ヒト動物またはトランスジェニック植物。
- 細胞毒性薬剤、放射性同位元素、または薬物に結合した請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体を含む免疫コンジュゲート。
- 細胞毒性薬剤、放射性同位元素、または薬物に結合した単量体IgM抗体である、請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体を含む免疫コンジュゲート。
- 請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体およびヒトエフェクター細胞に対する結合特異性を含む二重特異性分子または多重特異性分子。
- 請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体と、CD3、CD4、CD138、IL-15R、膜結合TNF-αもしくは受容体結合TNF-α、ヒトFc受容体、または膜結合IL-15もしくは受容体結合IL-15に対する結合特異性とを含む、二重特異性分子または多重特異性分子。
- 請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体、または請求項27もしくは28記載の免疫コンジュゲートと、薬学的に許容される担体とを含む、薬学的組成物。
- 1つまたは複数のさらなる治療薬剤を含む請求項31記載の薬学的組成物。
- CD38を発現する細胞の成長および/または増殖を阻害するための医薬の製造における、請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体、請求項27もしくは28記載の免疫コンジュゲート、請求項31もしくは32記載の薬学的組成物、または請求項18〜21のいずれか一項記載の発現ベクターの使用。
- 対象におけるCD38を発現する細胞が関与する疾患または障害を治療するための医薬の製造における、請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体、請求項27もしくは28記載の免疫コンジュゲート、請求項31もしくは32記載の薬学的組成物、または請求項18〜21のいずれか一項記載の発現ベクターの使用。
- 対象におけるCD38を発現する細胞が関与する疾患または障害を予防するための医薬の製造における、請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体、請求項27もしくは28記載の免疫コンジュゲート、請求項31もしくは32記載の薬学的組成物、または請求項18〜21のいずれか一項記載の発現ベクターの使用。
- 疾患または障害が関節リウマチである、請求項34または35記載の使用。
- 疾患または障害が多発性骨髄腫である、請求項34または35記載の使用。
- 前記医薬が1つまたは複数のさらなる治療薬剤を含む、請求項33〜37のいずれか一項記載の使用。
- 前記医薬が、1つまたは複数のさらなる治療薬剤と組み合わせて投与するためである、請求項33〜37のいずれか一項記載の使用。
- 前記投与が、同時、別々、または順次である、請求項39記載の使用。
- 一又は複数のさらなる治療薬剤がレナリドマイドである、請求項39〜40のいずれか一項記載の使用。
- 1つまたは複数のさらなる治療薬剤が、化学療法薬剤、抗炎症薬剤、または免疫抑圧薬剤および/もしくは免疫調整薬剤より選択される、請求項38記載の使用。
- 1つまたは複数のさらなる治療薬剤が、シスプラチン、ゲフィチニブ、セツキシマブ、リツキシマブ、ベバシズマブ、エルロチニブ、ボルテゾミブ、サリドマイド、パミドロネート、ゾレドロン酸、クロドロネート、リセンドロネート、イバンドロネート、エチドロネート、アレンドロネート、チルドロネート、三酸化ヒ素、レナリドマイド、フィルグラスチム、ペグフィルグラスチム、サルグラモスチム、スベロイラニリドヒドロキサム酸、およびSCIO-469からなる群より選択される、請求項38記載の使用。
- 試料における、CD38抗原の存在、またはCD38を発現する細胞を検出するためのインビトロ法であって、以下の工程を含む方法:
a)抗体とCD38の間の複合体の形成を可能にする条件下で、試料を請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体と接触させる工程;および
b)複合体の形成を検出する工程。 - 試料における、CD38抗原の存在、またはCD38を発現する細胞を検出するためのキットであって、請求項1〜16のいずれか一項記載の抗体を含むキット。
- 請求項1〜12、または14のいずれか一項記載の抗体に結合する抗イデオタイプ抗体。
- 試料における請求項1〜12、または14のいずれか一項記載の抗体のレベルを検出するための請求項46記載の抗イデオタイプ抗体の使用。
- 試料におけるCD38に対するヒトモノクローナル抗体のレベルを検出するための請求項46記載の抗イデオタイプ抗体の使用。
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