ES2328369T3 - Variantes de la region fc. - Google Patents
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Abstract
Un anticuerpo que comprende una variante de una región Fc humana original, o una de sus porciones que comprende la variante, en el que la variante comprende una sustitución de aminoácidos de una prolina por una leucina, histidina o isoleucina en una posición correspondiente a la prolina de la posición 247 de la secuencia de Fc humana según el formato del índice de EU de Kabat.
Description
Variantes de la región Fc.
La presente invención se refiere a variantes de
polipéptidos de la región Fc y a oligonucleótidos que codifican
variantes de la región Fc. Específicamente, la presente invención
proporciona composiciones que comprenden variantes nuevas de la
región Fc, procedimientos para identificar variantes útiles de la
región Fc y procedimientos para utilizar las variantes de la región
Fc (por ejemplo para tratar enfermedades).
En los seres humanos hay cinco tipos de
inmunoglobulinas. Estos grupos se conocen como IgG, IgM, IgD, IgA e
IgE, y se distinguen basándose en los isotipos del gen de la cadena
pesada (gamma, mu, delta, alfa y épsilon, respectivamente). El
isotipo más común es IgG, y está compuesto por dos polipéptidos de
cadena pesada idénticos y dos polipéptidos de cadena ligera
idénticos. Las dos cadenas pesadas están unidas una a la otra de
manera covalente por medio de enlaces disulfuro y cada cadena
ligera está unida a una cadena pesada por medio de un enlace
disulfuro. Cada cadena pesada contiene aproximadamente 445 residuos
de aminoácidos, y cada cadena ligera contiene aproximadamente 215
residuos de aminoácidos.
Cada cadena pesada contiene cuatro dominios
característicos que se denominan por lo general dominio variable
(VH), dominio pesado constante 1 (CH1), dominio pesado constante 2
(CH2) y dominio pesado constante 3 (CH3). Los dominios CH1 y CH2
están unidos por una región de bisagra (secciones interdominio) que
proporciona flexibilidad a la Ig. Cada cadena ligera contiene dos
dominios característicos que se denominan por lo general ligero
variable (VL) y ligero constante (CL).
Las regiones variables de las cadenas pesadas y
ligeras se unen directamente al antígeno y son responsables de la
diversidad y la especificidad de las Ig. Cada VL y VH tiene tres
regiones determinantes de complementariedad (CDR, conocidas también
como regiones hipervariables). Cuando el VL y el VH se juntan a
través de interacciones de las cadenas pesada y ligera, las CDR
forman una superficie de unión que entra en contacto con el
antígeno.
Mientras que las regiones variables están
involucradas en la unión del antígeno, los dominios constantes de
la cadena pesada, principalmente CH2 y CH3, están involucrados en
funciones diferentes de la unión al antígeno. Esta región, conocida
generalmente como la región Fc, tiene muchas funciones importantes.
Por ejemplo, la región Fc se une al complemento, que puede provocar
la fagocitosis o la citotoxicidad dependiente del complemento
(CDC). La región Fc también se une a receptores de Fc, que pueden
provocar la fagocitosis o la citotoxicidad celular dependiente de
anticuerpos (ADCC). La región Fc también desempeña una función para
ayudar a mantener la inmunoglobulina en circulación y tiene
interacción con la proteína A, que se usa comúnmente para purificar
la inmunoglobulina.
Ha habido recientemente un esfuerzo para mejorar
las calidades inmunogénicas y las características de unión al
antígeno de los anticuerpos. Por ejemplo, se han desarrollado
anticuerpos monoclonales, quiméricos y humanizados para la
inmunoterapia. Los ejemplos de anticuerpos que han sido aprobados
para la inmunoterapia en seres humanos, con la enfermedad
correspondiente, incluyen: RITUXAN (linfoma), SYNAGIS (enfermedad
infecciosa), ZENEPAX (transplante de riñón), REMICADE (enfermedad
de Crohn y artritis reumatoide), HERCEPTIN (carcinoma de mama) y
EDRECOLOMAB (cáncer del colon). Sin embargo, existen muchos
anticuerpos que han entrado en ensayos clínicos que no han recibido
la aprobación por falta de eficacia o por otros problemas
asociados.
Lo que resulta necesario, para mejorar la
eficacia y acelerar la aprobación de otros anticuerpos terapéuticos,
son composiciones y procedimientos para alterar las regiones Fc
para generar polipéptidos variantes con propiedades mejoradas.
La presente invención proporciona un anticuerpo
que comprende una variante de una región Fc original humana, o una
de sus porciones que comprende la variante, en el que la variante
comprende una sustitución de aminoácidos de una prolina por una
leucina, histidina o isoleucina en una posición correspondiente a la
prolina de la posición 247 en la secuencia del Fc humano según el
formato del índice de EU de Kabat. La presente invención
proporciona composiciones que comprenden una variante (o una
secuencia de ácido nucleico que codifica la variante) de un
polipéptido original que tiene al menos una porción de una región
Fc, en las que la variante media la citotoxicidad mediada por
células dependiente de anticuerpos (ADCC) en presencia de células
efectoras más eficazmente que el polipéptido original y comprende
al menos una modificación de aminoácidos en la posición 247 en la
región Fc. En formas de realización particulares, la variante
comprende un anticuerpo (por ejemplo un anticuerpo anti CD20). En
formas de realización de preferencia, la modificación de aminoácidos
es P247L.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona un péptido (que contiene la modificación de
aminoácidos P247L) que comprende la secuencia mostrada en la SEC ID
Nº: 15. En otras formas de realización, la presente invención
proporciona una secuencia de ácido nucleico que codifica una región
CH2 con la modificación P247L (por ejemplo SEC ID Nº: 40). En
algunas formas de realización, la presente invención proporciona una
secuencia de aminoácidos que codifica una región CH2 con la
modificación P247L que comprende la SEC ID Nº: 15. En ciertas
formas de realización, la presente invención proporciona un péptido
(que contiene la modificación L251F) con la secuencia mostrada en
SEC ID Nº: 16. En otras formas de realización, la presente invención
proporciona una secuencia de ácido nucleico que codifica una región
CH2 con la modificación L251F (por ejemplo SEC ID Nº: 41). En otras
formas de realización, la presente invención proporciona una
secuencia de aminoácidos que codifica una región CH2 con la
modificación L251F que comprende la SEC ID Nº: 16.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona composiciones que comprenden una variante (o
una secuencia de ácido nucleico que codifica la variante) de un
polipéptido original que tiene al menos una porción de una región
Fc, en las que la variante comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la posición 247 en la región Fc seleccionada de
P247H, P247I y P247L.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona composiciones que comprenden una variante de
un polipéptido original que tiene al menos una porción de una región
Fc, en las que la variante media la citotoxicidad mediada por
células dependiente de anticuerpos (ADCC) en presencia de células
efectoras más eficazmente que el polipéptido original y comprende
al menos una modificación de aminoácidos en la posición 247 en la
región Fc. En otras formas de realización, la presente invención
proporciona procedimientos que comprenden; a) proporcionar; i) una
composición que comprende una variante de un polipéptido original
que tiene al menos una porción de una región Fc, en la que la
variante media la citotoxicidad mediada por células dependiente de
anticuerpos (ADCC) en presencia de células efectoras más eficazmente
que el polipéptido original y comprende al menos una modificación
de aminoácidos en la posición 247 en la región Fc, y ii) un sujeto
con uno o más síntomas de una enfermedad; y b) administrar la
composición al sujeto bajo condiciones tales que se reduzca al
menos uno de los síntomas. En formas de realización particulares, la
variante comprende un anticuerpo o inmunoadhesina, y el sujeto
tiene síntomas de una enfermedad que responde a anticuerpos o
inmunoadhesinas.
En ciertas formas de realización, la variante
comprende al menos una porción de la región Fc (por ejemplo 40%,
50%, 60%, 80% o 90% o más de una región Fc que contiene la
modificación de aminoácidos). En algunas formas de realización, las
variantes de polipéptidos comprenden una región CH2 o CH3. En otras
formas de realización, las composiciones comprenden una secuencia
de aminoácidos que comprende la SEC ID Nº: 13. En algunas formas de
realización, las composiciones comprenden una secuencia de
aminoácidos que comprenden la SEC ID Nº: 14. En algunas formas de
realización, las composiciones comprenden una secuencia de
aminoácidos que comprenden la SEC ID Nº: 15. En ciertas formas de
realización, las composiciones comprenden una secuencia de ácido
nucleico que comprende la SEC ID Nº: 39 y/o SEC ID Nº: 39 y/o SEC
ID Nº: 40 o sus complementos, o secuencias que se unen a las SEC ID
Nº: 38, 39 ó 40 bajo condiciones de alta rigurosidad. En otras
formas de realización, la presente invención proporciona células
huésped (por ejemplo células CHO), y vectores que comprenden la SEC
ID Nº: 38 y/o SEC ID Nº: 39 y/o SEC ID Nº: 40. En formas de
realización particulares, la presente invención proporciona un
medio legible por ordenador, en las que el medio legible por
ordenador codifica una representación de SEC ID Nº: 13, 14, 15, 38,
39 ó 40.
En ciertas formas de realización, la variante
del polipéptido media la citotoxicidad mediada por células
dependiente de anticuerpos (ADCC) en presencia de células efectoras
más eficazmente que el polipéptido original. En algunas formas de
realización, la variante del polipéptido comprende un anticuerpo o
fragmento de anticuerpo (por ejemplo, anticuerpo policlonal,
anticuerpo monoclonal, anticuerpo quimérico, anticuerpo humanizado,
o fragmento de Fc). En algunas formas de realización, el
polipéptido original comprende una región Fc de IgG humana. En
otras formas de realización, el polipéptido original comprende una
región Fc de IgG1, IgG2, IgG3 ó IgG4 humanas. En otras formas de
realización, el polipéptido original comprende una secuencia de
aminoácidos seleccionada de las SEC ID
Nº: 1-12.
Nº: 1-12.
En formas de realización de preferencia, la
modificación de aminoácidos es P247H, P247I o P247L. En ciertas
formas de realización, la variante del polipéptido comprende una
segunda, tercera, cuarta, etc. modificación de aminoácidos en la
región Fc (véase, por ejemplo Tabla1). En algunas formas de
realización, la variante es un polipéptido expresado por CHO.
En otras formas de realización, las
composiciones comprenden una secuencia de ácido nucleico que
codifica una variante de un polipéptido original que comprende al
menos una porción de una región Fc, en las que la variante media la
citotoxicidad mediada por células dependiente de anticuerpos (ADCC)
en presencia de células efectoras más eficazmente que el
polipéptido original, y comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la posición 247, en la región Fc. En algunas formas
de realización, las composiciones comprenden una secuencia de ácido
nucleico que codifica un polipéptido variante de Fc que media la
citotoxicidad mediada por células dependiente de anticuerpos (ADCC)
en presencia de células efectoras más eficazmente que el polipéptido
original, en las que el polipéptido variante de Fc comprende una
modificación de aminoácidos en la posición del aminoácido 247 del
mismo.
En otras formas de realización, las
composiciones comprenden una secuencia de ácido nucleico que
codifica una variante de un polipéptido original que comprende al
menos una porción de una región Fc, en las que la variante media la
depleción de células diana en un ensayo en sangre entera más
eficazmente que el polipéptido original, y comprende al menos una
modificación de aminoácidos en la posición 247 del mismo en la
región Fc. En algunas formas de realización, las composiciones
comprenden una secuencia de ácido nucleico que codifica un
polipéptido variante de Fc que media la depleción de células diana
en un ensayo en sangre entera más eficazmente que el polipéptido
original, en las que el polipéptido variante de Fc comprende una
modificación de aminoácidos en la posición 247 del mismo.
En ciertas formas de realización, las variantes
de la presente invención, y las secuencias de ácidos nucleicos que
codifican las variantes, se proporcionan con al menos otro
componente en un kit. Por ejemplo, un kit puede comprender al menos
un tipo de variante e instrucciones escritas para usar la variante.
El kit puede contener también tampones y otros reactivos
útiles.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos que comprenden, a)
proporcionar; i) células que expresan el antígeno diana (CD20, por
ejemplo), ii) una composición que comprende una variante de un
polipéptido original que tiene al menos una porción de una región
Fc, en la que la variante comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la región Fc, y iii) células efectoras (PMBC
enriquecidas de donador(es)
humano(s), por ejemplo), y b) poner las células diana en contacto con la composición y las células efectoras bajo condiciones tales que la variante se una a las células diana (por ejemplo, por medio de un ligando que se expresa en la superficie celular) y c) medir la muerte de las células diana (liberación de LDH o cromo 51, por ejemplo).
humano(s), por ejemplo), y b) poner las células diana en contacto con la composición y las células efectoras bajo condiciones tales que la variante se una a las células diana (por ejemplo, por medio de un ligando que se expresa en la superficie celular) y c) medir la muerte de las células diana (liberación de LDH o cromo 51, por ejemplo).
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos que comprenden, a)
proporcionar; i) muestras de sangre entera que contienen células
que expresan el antígeno diana (células B que expresan CD20, por
ejemplo) y ii) una composición que comprende una variante de un
polipéptido original que tiene al menos una porción de una región
Fc, en la que la variante comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la región Fc y b) poner las células diana en
contacto con la composición bajo condiciones tales que la variante
se una a las células diana (por ejemplo, por medio del ligando de
CD20 que se expresa en la superficie celular) y c) medir la
desaparición de las células diana (Análisis Facs con otro marcador
de células B, tal como CD19, por ejemplo).
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para identificar variantes
mejoradas de especies dobles, que comprenden; a) proporcionar; i)
células diana, ii) una composición que comprende una variante
candidata de un polipéptido original que tiene una región Fc, en la
que la variante candidata comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la región Fc, y en la que la variante candidata media
la citotoxicidad de las células diana en presencia de una primera
especie de células efectoras más eficazmente que el polipéptido
original, y iii) células efectoras de la segunda especie, y b)
incubar la composición con las células diana bajo condiciones tales
que la variante candidata se una a las células diana generando de
esta manera células diana unidas a la variante, c) mezclar las
células efectoras de la segunda especie con las células diana
unidas a la variante candidata, d) medir la citotoxicidad de las
células diana (por ejemplo, mediada por la variante candidata), e)
determinar si la variante candidata media la citotoxicidad de las
células diana en presencia de las células efectoras de la segunda
especie más eficazmente que el polipéptido original. En algunas
formas de realización, el procedimiento comprende también
seleccionar los polipéptidos originales de la misma manera con las
células efectoras de la segunda especie. En otras formas de
realización, las etapas b) y c) se llevan a cabo simultáneamente.
En formas de realización particulares, el procedimiento comprende
además la etapa f) identificar una variante candidata como una
variante mejorada de especies dobles que media la citotoxicidad de
las células diana en presencia de las células efectoras de la
segunda especie más eficazmente que el polipéptido original. En
otras formas de realización, el procedimiento comprende además la
etapa f) identificar una variante candidata como una variante
mejorada de especies dobles que media la citotoxicidad de las
células diana en presencia de las células efectoras de la segunda
especie aproximadamente 1,2 veces (o aproximadamente 1,5 veces, 5
veces o aproximadamente 10 veces) más eficazmente que el polipéptido
original (por ejemplo, se observa aproximadamente 1,2 veces más
lisis de células diana).
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para identificar variantes
mejoradas de especies dobles, que comprenden; a) proporcionar; i)
células diana, ii) una composición que comprende una variante
candidato de un polipéptido original que tiene una región Fc, en la
que la variante candidata comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la región Fc, iii) células efectoras de la primera
especie, y iv) células efectoras de la segunda especie, y b)
incubar la composición con las células diana bajo condiciones tales
que la variante candidata se una a las células diana generando de
esta manera células diana unidas a la variante candidata, c)
mezclar las células efectoras de la primera especie con las células
diana unidas a la variable candidata, d) medir la citotoxicidad de
las células diana (por ejemplo, mediada por la variante candidata),
e) determinar que la variante candidata media la citotoxicidad de
las células diana en presencia de las células efectoras de la
primera especie más eficazmente que el polipéptido original, f)
mezclar las células efectoras de la segunda especie con las células
diana unidas a la variante candidata (por ejemplo, como se
generaron en la etapa b), g) medir la citotoxicidad de las células
diana (por ejemplo, mediada por la variante candidata), h)
determinar si la variante candidata media la citotoxicidad de las
células diana en presencia de las células efectoras de la segunda
especie más eficazmente que el polipéptido original.
En formas de realización particulares, el
procedimiento comprende además una etapa para determinar la
capacidad del polipéptido original para mediar la citotoxicidad de
las células diana en presencia de la primera especie y/o la segunda
especie. Por ejemplo, los procedimientos pueden comprender además
mezclar las células efectoras de la primera o segunda especie con
células diana unidas al polipéptido original, y a continuación medir
la citotoxicidad de las células diana (por ejemplo, determinar un
valor tal que haya un valor para comparar frente a las
variantes).
En ciertas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa g) administrar la variante
mejorada de especies dobles al animal de prueba, en las que el
animal de prueba es un miembro de la segunda especie. En otras
formas de realización, el procedimiento comprende además, previo a
la etapa a), una etapa de selección de la variante candidata en un
ensayo de unión al receptor de Fc (FcR). En ciertas formas de
realización, el ensayo de unión al FcR es un ensayo de unión al
receptor neonatal de Fc (FcRn).
En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además, previo a la etapa a), una etapa de
selección de la variante candidata en un ensayo CDC (Véase, por
ejemplo, la sección IV a continuación). En algunas formas de
realización, las células efectoras de la primera especie son células
mononucleares de sangre periférica humana (PBMC). En otras formas
de realización, las células efectoras de la primera especie son PBMC
de ratón o PBMC de rata. En ciertas formas de realización, las
células efectoras de la segunda especie son PBMC de ratón o PBMC de
rata. En formas de realización particulares, las células efectoras
de la segunda especie son PBMC humanas.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona los procedimientos para identificar las
variantes mejoradas de especies dobles que comprenden; a)
proporcionar; i) una composición que comprende una variante
candidata de un polipéptido original que tiene una región Fc, en la
que la variante candidata comprende al menos una modificación de
aminoácidos en la región Fc, y en la que la variante candidata media
la CDC más eficazmente que el polipéptido original, y iii) una
fuente de complemento de la segunda especie, y b) incubar la
composición con la segunda especie del complemento; y c) determinar
si la variante candidata media la CDC más eficazmente que el
polipéptido original. En formas de realización particulares, el
procedimiento comprende además la etapa d) identificar una variante
candidata como una variante mejorada de especies dobles.
En algunas formas de realización, las células
diana son células humanas (por ejemplo, que sobreexpresan uno o más
de los siguientes antígenos asociados a tumores: CD20, CD22, CD23,
CD40, CD63, receptor de EGF, receptor de her-2,
antígeno de membrana específico de la próstata, carbohidrato Y de
Lewis, gangliósidos GD_{2} y GD_{3}, lamp-1,
CO-029, L6 y ephA2). En ciertas formas de
realización, la variante comprende un anticuerpo, o una de sus
porciones, específico para las células diana. En otras formas de
realización, la variante candidata media la citotoxicidad de las
células diana en presencia de las células efectoras de la primera
especie aproximadamente 1,2 veces más eficazmente que el
polipéptido original. En algunas formas de realización, la etapa e)
comprende realizar una reacción de control con el polipéptido
original. En otras formas de realización, la medición comprende
cuantificar la muerte de células diana o la lisis de células diana.
En otras formas de realización, las células diana infectadas con
virus (por ejemplo VIH, CMV, hepatitis B o RSV, por ejemplo) u
organismos microbianos (por ejemplo, Staphylococcus, Streptococcus,
Pseudomonas, etc.). En ciertas formas de realización, las células
diana son organismos microbianos (por ejemplo, Staphylococcus,
Streptococcus, Pseudomonas, etc.). En algunas formas de
realización, las células diana se reemplazan con virus (por ejemplo,
VIH, CMV, hepatitis B o RSV).
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona composiciones que comprenden un polipéptido,
en las que el polipéptido comprende; i) una estructura humana no
modificada (por ejemplo, no se han realizado alteraciones a la
estructura humana que se presenta en la naturaleza), y ii) una
región Fc variante. En ciertas formas de realización, la estructura
humana no modificada es una estructura germinal humana. En otras
formas de realización, la presente invención proporciona
composiciones que comprenden un polipéptido, en las que el
polipéptido comprende: i) al menos una secuencia CDR aleatorizada y
ii) una región Fc variante. En otras formas de realización, la
presente invención proporciona composiciones que comprenden un
polipéptido, en las que el polipéptido comprende; i) una estructura
humana no modificada (por ejemplo, una estructura germinal humana),
ii) al menos una secuencia CDR aleatorizada, y iii) una región Fc
variante.
Para facilitar una comprensión de la invención,
a continuación se define una serie de términos.
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "sujeto" y "paciente" se refieren a cualquier
animal, tal como un mamífero como un perro, gato, ave, ganado, y de
preferencia un ser humano (por ejemplo un ser humano con una
enfermedad).
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "molécula de ácido nucleico que codifica",
"secuencia de ADN que codifica" y "ADN que codifica" se
refieren al orden o a la secuencia de desoxirribonucleótidos a lo
largo de una hebra de ácido desoxirribonucleico. El orden de estos
desoxirribonucleótidos determina el orden de aminoácidos a lo largo
de la cadena del polipéptido (proteína). La secuencia del ADN
codifica por consiguiente la secuencia de aminoácidos.
Se dice que las moléculas de ADN tienen
"extremos 5'" y "extremos 3'" porque los mononucleótidos
se hacen reaccionar para generar oligonucleótidos o polinucleótidos
de forma tal que el fosfato 5' de un anillo de pentosa del
mononucleótido se una al oxígeno 3' de su vecino en una dirección a
través de un enlace fosfodiéster. Por consiguiente, un extremo de
un oligonucleótido o polinucleótido, se denomina "extremo 5'"
si su fosfato 5' no está unido al oxígeno 3' de un anillo de
pentosa del mononucleótido y se denomina "extremo 3'" si su
oxígeno 3' no está unido al fosfato 5' de un anillo de pentosa del
siguiente mononucleótido. Según se utiliza en el presente
documento, una secuencia de ácido nucleico, incluso si es interna a
un oligonucleótido o a un polinucleótido más grande, también puede
decirse que tiene extremos 5' y 3'. En una molécula de ADN, ya sea
lineal o circular, se hace referencia a elementos discretos como
elementos "secuencia arriba" o 5' de los elementos
"secuencia abajo" o 3'. Esta terminología refleja el hecho de
que la transcripción procede de una manera 5' a 3' a lo largo de la
hebra del ADN. Los elementos promotores y potenciadores que dirigen
la transcripción de un gen ligado están localizados generalmente 5'
o secuencia arriba de la región codificadora. Sin embargo, los
elementos potenciadores pueden ejercer su efecto incluso cuando
están localizados 3' del elemento promotor y de la región
codificadora. Las señales de terminación de la transcripción y
poliadenilación están localizadas 3' o secuencia abajo de la región
codificadora.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "codón" o "triplete" se refiere a un triplete de
tres monómeros de nucleótidos adyacentes que especifican uno de los
veinte aminoácidos que se presentan en la naturaleza que se
encuentran en la biosíntesis de polipéptidos. El término también
incluye los codones sin sentido que no especifican ningún
aminoácido.
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "un oligonucleótido que tiene una secuencia de
nucleótidos que codifica un polipéptido", "polinucleótido que
tiene una secuencia de nucleótidos que codifica un polipéptido"
y "secuencia de ácido nucleico que codifica un polipéptido"
significa una secuencia de ácido nucleico que comprende la región
codificadora de un polipéptido particular. La región codificadora
puede estar presente en forma de ADNc, ADN genómico o ARN. Cuando
está presente en forma de un ADN, el oligonucleótido o el
polinucleótido puede tener hebra única (es decir, la hebra sentido)
o hebra doble. Los elementos de control adecuados tales como
potenciadores/promotores, uniones de empalme, señales de
poliadenilación, etc. pueden estar colocados en estrecha proximidad
con la región codificadora del gen si es necesario para permitir la
iniciación apropiada de la transcripción y/o el procesamiento
correcto del transcripto primario del ARN. Como alternativa, la
región codificadora utilizada en los vectores de expresión de la
presente invención pueden contener potenciadores/promotores,
uniones de empalme, secuencias de intervención, señales de
poliadenilación, etc. endógenos o una combinación de elementos de
control endógenos y exógenos.
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "complementario" o "complementariedad" se
utilizan con referencia a los polinucleótidos (es decir, una
secuencia de nucleótidos) relacionados por las reglas de
apareamiento de bases. Por ejemplo, para la secuencia
"A-G-T", es complementaria a la
secuencia "T-C-A". La
complementariedad puede ser "parcial", en la que solamente
algunas de las bases de los ácidos nucleicos se aparean
correctamente según las reglas de apareamiento de bases. O, puede
haber complementariedad "completa" o "total" entre los
ácidos nucleicos. El grado de complementariedad entre las hebras de
los ácidos nucleicos tiene efectos significativos en la eficacia y
la fuerza de la hibridación entre las hebras de los ácidos
nucleicos. Esto es de particular importancia en las reacciones de
amplificación, así como en los procedimientos de detección que
dependen de la unión entre los ácidos nucleicos.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "el complemento de" una secuencia dada se usa con
referencia a la secuencia que es totalmente complementaria a la
secuencia a lo largo de su longitud total. Por ejemplo, la
secuencia A-G-T-A es
"el complemento" de la secuencia
T-C-A-T.
El término "homología" (cuando se usa con
referencia a las secuencias de ácidos nucleicos) se refiere a un
grado de complementariedad. Puede haber homología parcial u
homología completa (es decir, identidad). Una secuencia
parcialmente complementaria es una que inhibe al menos parcialmente
la hibridación de una secuencia totalmente complementaria a un
ácido nucleico diana y se la denomina usando el término funcional
"sustancialmente homóloga". El término "inhibición de
unión", cuando se usa con referencia a la unión de ácidos
nucleicos, se refiere a la inhibición de unión causada por la
competición de las secuencias homólogas por la unión a una
secuencia diana. La inhibición de la hibridación de la secuencia
totalmente complementaria a la secuencia diana puede examinarse
usando un ensayo de hibridación (transferencia Southern o Northern,
hibridación de disolución y similares) bajo condiciones de
rigurosidad baja. Una sonda o secuencia sustancialmente homóloga
competirá por e inhibirá la unión (es decir, la hibridación) de una
secuencia completamente homóloga a una diana bajo condiciones de
baja rigurosidad. Esto no significa que las condiciones de baja
rigurosidad sean tales que se permita la unión no específica; las
condiciones de baja rigurosidad requieren que la unión de dos
secuencias una a la otra sea una interacción específica (es decir,
selectiva). La ausencia de unión no específica puede analizarse por
medio del uso de una segunda diana que carece incluso de un grado
parcial de complementariedad (por ejemplo, menos de aproximadamente
el 30% de identidad); en ausencia de unión no específica la sonda
no hibridará a la segunda diana no complementaria.
La técnica conoce bien que pueden usarse
numerosas condiciones equivalentes para comprender condiciones de
baja rigurosidad; se consideran factores tales como la longitud y la
naturaleza (ADN, ARN, composición de bases) de la sonda y la
naturaleza de la diana (ADN, ARN, composición de bases, presente en
disolución o inmovilizada, etc.) y la concentración de las sales y
de los otros componentes (por ejemplo, la presencia o ausencia de
formamida, sulfato de dextrano, polietilenglicol) y la disolución de
hibridación puede variarse para generar condiciones de hibridación
de baja rigurosidad diferentes de, pero equivalentes a, las
condiciones presentadas anteriormente. Además, la técnica conoce
las condiciones que promueven la hibridación bajo condiciones de
rigurosidad alta (por ejemplo, aumentando la temperatura de la
hibridación y/o las etapas de lavado, el uso de formamida en la
disolución de hibridación,
etc.).
etc.).
Una secuencia de ácido nucleico (por ejemplo,
que codifica una región Fc variante o una de sus porciones) puede
producir múltiples especies de ARN que se generan por empalmes
diferenciales de la transcripción primaria del ARN. Los ADNc que
son variantes de empalme del mismo gen contendrán regiones de
identidad de secuencia o de homología completa (que representan la
presencia del mismo exón o de una porción del mismo exón en ambos
ADNc) y regiones de identidad incompleta (por ejemplo, que
representan la presencia del exón "A" en el ADNc 1 en las que
el ADNc 2 contiene en su lugar el exón "B"). Como los dos ADNc
contienen regiones de identidad de secuencia, ambos hibridarán con
una sonda derivada del gen completo o de porciones del gen que
contienen las secuencias que se encuentran en ambos ADNc; las dos
variantes de empalme son por consiguiente sustancialmente homólogas
a una de tales sondas y una a la otra.
Cuando se usa con referencia a una secuencia de
ácido nucleico de hebra única, el término "sustancialmente
homólogo" se refiere a cualquier sonda que puede hibridar con (es
decir, es el complemento de) la secuencia del ácido nucleico de
hebra única bajo condiciones de rigurosidad baja.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "hibridación" se usa con referencia al apareamiento de
ácidos nucleicos complementarios. La hibridación y la fuerza de la
hibridación (es decir, la fuerza de la asociación entre los ácidos
nucleicos) están afectadas por factores tales como el grado de
complementariedad entre los ácidos nucleicos, la rigurosidad de las
condiciones implicadas, la Tf del híbrido formado, y la relación
G:C dentro de los ácidos nucleicos.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "T_{f}" se usa con referencia a la "temperatura de
fusión". La temperatura de fusión es la temperatura a la que una
población de moléculas de ácido nucleico de doble hebra se disocia
por la mitad dando lugar a cadenas simples. La ecuación para
calcular la T_{f} de los ácidos nucleicos es muy conocida en la
técnica. Según se indica por las referencias convencionales, puede
calcularse una simple estimación del valor de T_{f} por medio de
la ecuación: T_{f} = 81,5 + 0,41 (% G + C), cuando un ácido
nucleico está en disolución acuosa de NaCI 1 M (véase por ejemplo,
Anderson y Young, Quantitative Filter Hybridization, en Nucleic
Acid Hybridization [1985]). Otras referencias incluyen cálculos más
sofisticados que consideran características estructurales así como
de la secuencia para el cálculo de la T_{f}, y en algunos casos
la T_{f} puede determinarse empíricamente comenzando con la
T_{f} calculada y probando pequeños aumentos o disminuciones de
la temperatura y examinando el efecto en la población de moléculas
de ácido nucleico.
Según se utiliza en el presente documento el
término "rigurosidad" se usa con referencia a las condiciones
de temperatura, fuerza iónica, y la presencia de otros compuestos
tales como disolventes orgánicos, bajo los que se llevan a cabo las
hibridaciones de ácidos nucleicos. Los expertos en la técnica
reconocerán que las condiciones de "rigurosidad" pueden
alterarse variando los parámetros recientemente descritos
individualmente o en combinación. Con condiciones de "rigurosidad
alta", el apareamiento de las bases del ácido nucleico tendrá
lugar solamente entre los fragmentos del ácido nucleico que tienen
una alta frecuencia de secuencias de bases complementarias (por
ejemplo, la hibridación bajo condiciones de la "rigurosidad
alta" puede tener lugar entre homólogos con aproximadamente
85-100% de identidad, de preferencia aproximadamente
70-100% de identidad). Con condiciones de
rigurosidad media, el apareamiento de las bases del ácido nucleico
tendrá lugar entre los ácidos nucleicos con una frecuencia
intermedia de secuencias de bases complementarias (por ejemplo, la
hibridación bajo condiciones de "rigurosidad media" puede
tener lugar entre homólogos con aproximadamente
50-70% de identidad). Por consiguiente, con
frecuencia son necesarias condiciones de rigurosidad "débil" o
"baja" con los ácidos nucleicos que derivan de organismos
genéticamente diversos, ya que la frecuencia de secuencias
complementarias es usualmente menor.
"Condiciones de alta rigurosidad", cuando
se usa con referencia a la hibridación de ácidos nucleicos comprende
condiciones equivalentes a la unión o hibridación a 42ºC en una
disolución constituida por 5X SSPE (NaCl 43,8 g/l,
NaH_{2}PO_{4} H_{2}O 6,9 g/ y EDTA 1,85 g/l, pH ajustado hasta
7,4 con NaOH), SDS al 0,5%, 5X reactivo de Denhardt y ADN de
esperma de salmón desnaturalizado 100 \mug/ml seguida por el
lavado en una disolución que comprende 0,1X SSPE, SDS al 1,0% a
42ºC cuando se utiliza una sonda de aproximadamente 500 nucleótidos
de longitud.
"Condiciones de rigurosidad media", cuando
se usa con referencia a la hibridación de ácidos nucleicos comprende
las condiciones equivalentes a la unión o hibridación a 42ºC en una
disolución constituida por 5X SSPE (NaCl 43,8 g/l,
NaH_{2}PO_{4} H_{2}O 6,9 g/l y EDTA 1,85 g/l, pH ajustado
hasta 7,4 con NaOH), SDS al 0,5%, 5X reactivo de Denhardt y ADN de
esperma de salmón desnaturalizado 100 \mug/ml seguida por el
lavado en una disolución que comprende 1,0X SSPE, SDS al 1,0% a
42ºC cuando se utiliza una sonda de aproximadamente 500 nucleótidos
de longitud.
"Condiciones de baja rigurosidad "
comprende las condiciones equivalentes a la unión o hibridación a
42ºC en una disolución constituida por 5X SSPE (NaCl 43,8 g/l,
NaH_{2}PO_{4} H_{2}O 6,9 g/l y EDTA 1,85 g/l, pH ajustado
hasta 7,4 con NaOH), SDS al 0,1%, 5X reactivo de Denhardt [50X
reactivo de Denhardt contiene por 500 ml: Ficoll 5 g (Tipo 400,
Pharmacia), BSA 5 g (Fraction V; Sigma)] y ADN de esperma de salmón
desnaturalizado 100 \mug/ml seguida por el lavado en una
disolución que comprende 5X SSPE, SDS al 1,0% a 42ºC cuando se
utiliza una sonda de aproximadamente 500 nucleótidos de
longitud.
Los siguientes términos se usan para describir
las relaciones de secuencias entre dos o más polinucleótidos:
"secuencia de referencia", "identidad de secuencia" y
"porcentaje de identidad de secuencia". Una "secuencia de
referencia" es una secuencia definida utilizada como base para
una comparación de secuencias; una secuencia de referencia puede
ser una subserie de una secuencia más grande, por ejemplo, como un
segmento de una secuencia de ADNc de longitud total dada en un
listado de secuencias o puede comprender una secuencia completa del
gen. Generalmente, una secuencia de referencia tiene una longitud
de al menos 25 nucleótidos, y con frecuencia al menos 50
nucleótidos de longitud (por ejemplo, puede usarse cualquiera de las
SEC ID Nº: 32-37 como una secuencia de referencia).
Puesto que dos polinucleótidos pueden cada uno (1) comprender una
secuencia (es decir, una porción de la secuencia completa del
polinucleótido) que es similar entre los dos polinucleótidos, y (2)
pueden comprender además una secuencia que es divergente entre los
dos polinucleótidos, las comparaciones de secuencias entre dos (o
más) polinucleótidos se realizan típicamente comparando secuencias
de los dos polinucleótidos sobre una "ventana de la
comparación" para identificar y comparar las regiones locales de
similitud de secuencia. Una "ventana de comparación", como se
usa en el presente documento, se refiere a un segmento conceptual de
al menos 20 posiciones de nucleótidos adyacentes en la que una
secuencia del polinucleótido puede compararse con una secuencia de
referencia de al menos 20 nucleótidos adyacentes y en la que la
porción de la secuencia del polinucleótido en la ventana de
comparación puede comprender adiciones o deleciones (es decir,
huecos) del 20 por ciento o menos en comparación con la secuencia
de referencia (que no comprende adiciones o deleciones) para la
alineación óptima de las dos secuencias. La alineación óptima de las
secuencias para alinear una ventana de comparación puede realizarse
por medio del algoritmo de homología local de Smith y Waterman
[Smith and Waterman, Adv. Appl. Math. 2: 482 (1981)], por medio del
algoritmo de alineación de homología de Needleman y Wunsch
[Needleman and Wunsch, J. Mol. Biol. 48: 443 (1970)], por el método
de búsqueda de similitud de Pearson y Lipman [Pearson and Lipman,
Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 85: 2444 (1988)], por
implementaciones computerizadas de estos algoritmos (GAP, BESTFIT,
FASTA, y TFASTA en el Wisconsin Genetics Software Package Release
7.0, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, Wis.), o
por inspección, y se selecciona la mejor alineación (es decir, que
da lugar al porcentaje más alto de homología sobre la ventana de
comparación) generada por los diversos procedimientos. El término
"identidad de secuencia" significa que dos secuencias de
polinucleótidos son idénticas (es decir, nucleótido a nucleótido)
sobre la ventana de comparación. El término "porcentaje de
identidad de secuencia" se calcula comparando dos secuencias
alineadas de manera óptima sobre la ventana de comparación,
determinando el número de posiciones en que se presentan las bases
idénticas del ácido nucleico (por ejemplo, A, T, C, G, U o I) en
ambas secuencias para dar el número de posiciones coincidentes,
dividiendo el número de posiciones coincidentes por el número total
de posiciones en la ventana de comparación (es decir, el tamaño de
la ventana), y multiplicando el resultado por 100 para dar el
porcentaje de identidad de secuencia. La ventana de comparación,
según se usa en la presente solicitud, es la longitud completa de la
secuencia de referencia expuesta (es decir, si se expone la SEC ID
Nº: 33 como la secuencia de referencia, el porcentaje de identidad
de secuencia se compara sobre la longitud completa de la SEC ID Nº:
33).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "sonda" se refiere a un oligonucleótido (es decir, una
secuencia de nucleótidos), ya sea que se presente naturalmente como
en un producto de digestión por restricción purificado o se
produzca sintéticamente, de manera recombinante o por medio de
amplificación por PCR, que es capaz de hibridar con otro
oligonucleótido de interés. Una sonda puede ser de hebra única o de
doble hebra. Las sondas son útiles en la detección, la
identificación y el aislamiento de secuencias de genes particulares.
Está contemplado que cualquier sonda utilizada en la presente
invención puede marcarse con cualquier "molécula informadora",
de modo que sea detectable en cualquier sistema de detección,
incluyendo, pero no limitado a sistemas enzimáticos (por ejemplo,
ELISA, así como ensayos histoquímicos basados en enzimas),
fluorescentes, radioactivos y luminiscentes. No es la intención que
la presente invención esté limitada a cualquiera de los sistemas de
detección o marcadores particulares.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "reacción en cadena de la polimerasa" ("PCR") se
refiere al procedimiento descrito en las Patentes de EEUU Nº
4.683.195, 4.683.202 y 4.965.188, que describen un procedimiento
para aumentar la concentración de un segmento de una secuencia diana
en una mezcla de ADN genómico sin clonación o purificación. Este
procedimiento para amplificar la secuencia diana está constituido
por la introducción de un gran exceso de cebadores de dos
oligonucleótidos a la mezcla del ADN que contiene la secuencia diana
deseada, seguida por una secuencia precisa de ciclos térmicos en
presencia de una polimerasa de ADN. Los dos cebadores son
complementarios a sus hebras respectivas de la secuencia diana de
doble hebra. Para que tenga efecto la amplificación, se
desnaturaliza la mezcla y a continuación se hibridan los cebadores a
sus secuencias complementarias dentro de la molécula diana. Tras la
hibridación, se extienden los cebadores con una polimerasa para
formar un nuevo par de hebras complementarias. Las etapas de
desnaturalización, hibridación del cebador y extensión de la
polimerasa pueden repetirse muchas veces (es decir, la
desnaturalización, la hibridación y la extensión constituyen un
"ciclo"; puede haber numerosos "ciclos") para obtener una
alta concentración de un segmento amplificado de la secuencia diana
deseada. La longitud del segmento amplificado de la secuencia diana
deseada se determina por las posiciones relativas de los cebadores
uno respecto al otro, y por consiguiente, esta longitud es un
parámetro controlable. En virtud del aspecto repetitivo del proceso,
se hace referencia al procedimiento como la "reacción en cadena
de la polimerasa" (de aquí en adelante "PCR"). Como los
segmentos amplificados deseados de la secuencia diana se convierten
en las secuencias predominantes (en términos de concentración) en
la mezcla, se dice que están "amplificados por PCR".
Con PCR, es posible amplificar una única copia
de una secuencia diana específica en el ADN genómico hasta un nivel
detectable por varias metodologías diferentes (por ejemplo,
hibridación con una sonda marcada; incorporación de cebadores
biotinilados seguida por la detección con conjugado de
avidina-enzima; incorporación de trifosfatos del
desoxinucleótido marcados con ^{32}P, tales como dCTP o dATP, en
el segmento amplificado). Además del ADN genómico, cualquier
oligonucleótido o secuencia de polinucleótidos puede amplificarse
con la serie adecuada de moléculas de cebadores. En particular, los
segmentos amplificados creados por el procedimiento de PCR mismo
son, en sí mismos, moldes eficaces para las siguientes
amplificaciones por PCR.
El término "aislado" cuando se usa con
relación a un ácido nucleico, como en "un oligonucleótido
aislado" o "polinucleótido aislado" se refiere a una
secuencia del ácido nucleico que se identifica y se separa de al
menos un ácido nucleico contaminante con el que está normalmente
asociado en su fuente natural. El ácido nucleico aislado está
presente en una forma o configuración que es diferente de la que se
encuentra en la naturaleza. Por consiguiente, las moléculas de
ácido nucleico aisladas se distinguen de las moléculas de ácido
nucleico como existe en las células naturales. Sin embargo, una
molécula de ácido nucleico aislada incluye una molécula de ácido
nucleico contenida en las células que normalmente expresan el
polipéptido donde, por ejemplo, la molécula de ácido nucleico está
en una ubicación cromosómica diferente de la de las células
naturales. El ácido nucleico, el oligonucleótido o el
polinucleótido aislado pueden estar presentes en forma de hebra
única o de doble hebra. Cuando un ácido nucleico, un oligonucleótido
o un polinucleótido aislado va a utilizarse para expresar una
proteína, el oligonucleótido o el polinucleótido contendrá como
mínimo la secuencia sentido o codificadora (es decir, el
oligonucleótido o el polinucleótido pueden ser de hebra única), pero
pueden contener tanto la hebra sentido como la antisentido o
complementaria (es decir, el oligonucleótido o el polinucleótido
pueden ser de doble hebra).
Según se utiliza en el presente documento el
término "porción" cuando se usa con referencia a una secuencia
de nucleótidos (como en "una porción de una secuencia de
nucleótidos dada") se refiere a fragmentos de esa secuencia. Los
fragmentos pueden variar en tamaño desde diez nucleótidos hasta la
secuencia de nucleótidos completa menos un nucleótido (por ejemplo,
10 nucleótidos, 20, 30, 40, 50, 100, 200, etc.).
Según se utiliza en el presente documento el
término "porción" cuando se usa con referencia a una secuencia
de aminoácidos (como en "una porción de una secuencia de
aminoácidos dada") se refiere a fragmentos de esa secuencia. Los
fragmentos pueden variar en tamaño desde seis aminoácidos hasta la
secuencia de aminoácidos completa menos un aminoácido (por ejemplo,
6 aminoácidos, 10, 20, 30, 40, 75, 200, etc.).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "purificado" o "purificar" se refiere a la
eliminación de contaminantes de una muestra. Por ejemplo, los
anticuerpos específicos de antígeno pueden purificarse por la
eliminación de proteínas diferentes de inmunoglobulinas
contaminantes; estos pueden también purificarse por la eliminación
de la inmunoglobulina que no se une al mismo antígeno. La
eliminación de las proteínas diferentes de inmunoglobulinas y/o la
eliminación de las inmunoglobulinas que no se unen a un antígeno
particular dan lugar a un aumento en el porcentaje de
inmunoglobulinas específicas de antígeno en la muestra. En otro
ejemplo, los polipéptidos recombinantes específicos de antígeno se
expresan en células huésped bacterianas y los polipéptidos se
purifican por eliminación de las proteínas de la célula huésped; de
este modo aumenta el porcentaje de polipéptidos recombinantes
específicos de antígeno en la muestra.
El término "molécula de ADN recombinante",
según se utiliza en el presente documento, se refiere a una molécula
de ADN que comprende segmentos de ADN unidos juntos por medio de
técnicas de biología molecular.
El término "proteína recombinante" o
"polipéptido recombinante", según se utiliza en el presente
documento, se refiere a una molécula de proteína que se expresa a
partir de una molécula de ADN recombinante.
El término "proteína nativa", como se usa
en el presente documento, indica que una proteína no contiene los
residuos de aminoácidos codificados por secuencias de vectores; es
decir, la proteína nativa contiene solamente los aminoácidos que se
encuentran en la proteína como se presenta comúnmente en la
naturaleza. Una proteína nativa puede producirse por medios
recombinantes o puede aislarse de una fuente que se presenta en la
naturaleza.
El término "transferencia Southern", se
refiere al análisis de ADN en geles de agarosa o de acrilamida para
fraccionar el ADN según el tamaño seguido por la transferencia del
ADN del gel a un soporte sólido, tal como nitrocelulosa o una
membrana de nailon. A continuación se pone el ADN inmovilizado en
contacto con una sonda marcada para detectar las especies de ADN
complementarias a la sonda utilizada. El ADN puede escindirse con
enzimas de restricción antes de la electroforesis. Tras la
electroforesis, el ADN puede despurinarse y desnaturalizarse
parcialmente antes o durante la transferencia al soporte sólido. Las
transferencias Southern son una herramienta convencional de los
biólogos moleculares (J. Sambrook y col., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, NY, pág.
9.31-9.58 [1989]).
El término "transferencia Northern", según
se utiliza en el presente documento, se refiere al análisis del ARN
por electroforesis del ARN en geles de agarosa para fraccionar el
ARN según el tamaño seguido por la transferencia del ARN del gel a
un soporte sólido, tal como nitrocelulosa o una membrana de nailon.
A continuación se pone el ARN en contacto con una sonda marcada
para detectar las especies del ARN complementarias a la sonda
utilizada. Las transferencias Northern son una herramienta
convencional de los biólogos moleculares (J. Sambrook, y col.,
supra, pág. 7.39-7. 52 [1989]).
El término "transferencia Western" se
refiere al análisis de proteína(s) (o polipéptidos)
inmovilizados sobre un soporte tal como nitrocelulosa o una
membrana. Las proteínas se hacen correr en geles de acrilamida para
separar las proteínas; seguido por la transferencia de la proteína
del gel a un soporte sólido, tal como nitrocelulosa o una membrana
de nailon. A continuación se exponen las proteínas inmovilizadas a
los anticuerpos con reactividad contra un antígeno de interés. La
unión de los anticuerpos puede detectarse por medio de diversos
procedimientos, incluido el uso de anticuerpos marcados
radioactivamente.
El término "determinante antigénico", según
se utiliza en el presente documento, se refiere a la porción de un
antígeno que hace contacto con un anticuerpo particular (es decir,
un epítopo). Cuando se usa una proteína o un fragmento de una
proteína para inmunizar un animal huésped, numerosas regiones de la
proteína pueden inducir la producción de anticuerpos que se unen
específicamente a una región dada o a una estructura tridimensional
en la proteína; se hace referencia a estas regiones o estructuras
como determinantes antigénicos. Un determinante antigénico puede
competir con el antígeno intacto (es decir, el "inmunógeno"
utilizado para provocar la respuesta inmune) por la unión a un
anticuerpo.
\newpage
El término "transgén", según se utiliza en
el presente documento, se refiere a un gen extraño, heterólogo o
autólogo que se coloca en un organismo introduciendo el gen en
huevos recientemente fertilizados o en embriones tempranos. El
término "gen extraño" se refiere a cualquier ácido nucleico
(por ejemplo, secuencia genética) que se introduce en el genoma de
un animal por medio de manipulaciones experimentales y puede incluir
secuencias genéticas que se encuentran en ese animal, siempre y
cuando el gen introducido no resida en la misma ubicación en que lo
hace el gen que se presenta en la naturaleza. El término "gen
autólogo" tiene la intención de abarcar las variantes (por
ejemplo, los polimorfismos o mutantes) del gen que se presenta en la
naturaleza. Por consiguiente, el término transgén abarca el
reemplazo del gen que se presenta en la naturaleza con una forma
variante del gen.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "vector" se usa con referencia a las moléculas de ácido
nucleico que transfieren el(los) segmento(s) de ADN
de una célula a otra. El término "vehículo" se utiliza algunas
veces indistintamente con "vector".
El término "vector de expresión", según se
utiliza en el presente documento, se refiere a una molécula de ADN
recombinante que contiene una secuencia codificadora deseada y las
secuencias de ácidos nucleicos adecuadas necesarias para la
expresión de la secuencia codificadora unida de manera operativa en
un organismo huésped particular. Las secuencias de ácidos nucleicos
necesarias para la expresión en procariotas incluyen usualmente un
promotor, un operador (opcional) y un sitio de unión de ribosomas,
frecuentemente junto con otras secuencias. Se sabe que las células
eucariotas utilizan promotores, potenciadores y señales de
terminación y de poliadenilación.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "célula huésped" se refiere a cualquier célula
eucariota o procariota (por ejemplo, células bacterianas tales como
E. coli, células CHO, células de levaduras, células de
mamíferos, células de aves, células de anfibios, células de plantas,
células de peces y células de insectos), localizada in vitro
o in vivo. Por ejemplo, las células huésped pueden estar
localizadas en un animal transgénico.
Los términos "transfección" y
"transformación", según se utilizan en el presente documento,
se refieren a la introducción de ADN extraño en las células (por
ejemplo células eucariotas y procariotas). La transfección puede
llevarse a cabo por una diversidad de medios conocidos en la técnica
que incluyen la coprecipitación de ADN con fosfato de calcio, la
transfección mediada por DEAE-dextrano, la
transfección mediada por polibreno, la electroporación, la
microinyección, la fusión de liposomas, la lipofección, la fusión de
protoplastos, la infección retroviral y la biolística.
El término "transfección estable" o
"transfectado de manera estable" se refiere a la introducción e
integración del ADN extraño en el genoma de la célula transfectada.
El término "transfectante estable" se refiere a una célula que
tiene ADN extraño integrado de manera estable en el ADN
genómico.
El término "transfección transitoria" o
"transfectado de manera transitoria" se refiere a la
introducción de ADN extraño en una célula en la que el ADN extraño
no se integra en el genoma de la célula transfectada. El ADN
extraño persiste en el núcleo de la célula transfectada durante
varios días. Durante este tiempo el ADN extraño está sometido a los
controles reguladores que gobiernan la expresión de los genes
endógenos en los cromosomas. El término "transfectante
transitorio" se refiere a las células que han tomado el ADN
extraño pero que pueden no haber integrado este ADN.
El término "coprecipitación con fosfato de
calcio" se refiere a una técnica para introducir ácidos nucleicos
en una célula. La captación de ácidos nucleicos por las células se
potencia cuando el ácido nucleico se presenta como un coprecipitado
de fosfato de calcio-ácido nucleico. La técnica original de Graham y
de van der Eb (Graham and van der Eb, Virol., 52: 456 [1973]), ha
sido modificada por varios grupos para optimizar las condiciones
para los tipos de células particulares. La técnica es muy consciente
de estas numerosas modificaciones.
Una "composición que comprende una secuencia
de polinucleótidos dada", según se utiliza en el presente
documento, se refiere ampliamente a cualquier composición que
contiene la secuencia de polinucleótidos dada. La composición puede
comprender una disolución acuosa. Las composiciones que comprenden
las secuencias de polinucleótidos que codifican, por ejemplo, una
región variante de Fc o sus fragmentos, pueden usarse como sondas de
hibridación. En este caso, las secuencias de polinucleótidos que
codifican la región variante de Fc se utilizan típicamente en una
disolución acuosa que contiene sales (por ejemplo, NaCI),
detergentes (por ejemplo, SDS) y otros componentes (por ejemplo,
disolución de Denhardt, leche en polvo, ADN de esperma de salmón,
etc.).
El término "compuesto de prueba" o
"compuesto candidato" se refiere a cualquier entidad química,
compuesto farmacéutico, fármaco, y similares que pueden usarse para
tratar o prevenir una enfermedad, una afección, un padecimiento, o
un trastorno de la función corporal, o de otra manera alterar el
estado fisiológico o celular de una muestra. Los compuestos de
prueba comprenden los compuestos terapéuticos conocidos y
potenciales. Puede determinarse que un compuesto de prueba es
terapéutico por selección usando los procedimientos de selección de
la presente invención. Un "compuesto terapéutico conocido" se
refiere a un compuesto terapéutico que se ha mostrado (por ejemplo,
a través de ensayos con animales o experiencia anterior con la
administración a seres humanos) que es eficaz en tal tratamiento o
prevención.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "respuesta", cuando se usa con referencia a un ensayo,
se refiere a la generación de un señal detectable (por ejemplo,
acumulación de la proteína informadora, aumento en la concentración
de iones, acumulación de un producto químico detectable).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "gen informador" se refiere a un gen que codifica una
proteína que puede analizarse. Los ejemplos de genes informadores
incluyen, pero no se limitan a, la luciferasa (Véase, por ejemplo,
deWet y col., Mol. Cell. Biol. 7: 725 [1987] y la Patente de EEUU Nº
6.074.859), la proteína fluorescente verde (GFP) (por ejemplo,
Número de Acceso del GenBank U43284; una serie de variantes de la
GFP están disponibles comercialmente de CLONTECH Laboratories, Palo
Alto, CA), la acetiltransferasa del cloranfenicol, la
\beta-galactosidasa, la fosfatasa alcalina y la
peroxidasa del rábano picante.
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "memoria de ordenador" y "dispositivo de memoria de
ordenador" se refieren a cualquier medio de almacenamiento
legible por un procesador del ordenador. Los ejemplos de memoria de
ordenador incluyen, pero no se limitan a, RAM, ROM, chips de
ordenador, disco de vídeo digital (DVD), discos compactos (CD),
discos rígidos (HDD) y cinta magnética.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "medio legible por ordenador" se refiere a cualquier
dispositivo o sistema para almacenar y proporcionar la información
(por ejemplo, los datos e instrucciones) a un procesador del
ordenador. Los ejemplos de medios legibles por ordenador incluyen,
pero no se limitan a, DVD, CD, discos rígidos, cinta magnética y
servidores para medios de transmisión en redes.
Según se utiliza en el presente documento, la
frase "el medio legible por ordenador codifica una
representación" de una secuencia de ácido nucleico o de
aminoácidos, se refiere al medio legible por ordenador que tiene
almacenado en el mismo la información, que cuando se suministra a
un procesador, permite presentar la secuencia del ácido nucleico o
la secuencia de aminoácidos a un usuario (por ejemplo impresa o
presentada en una pantalla de visualización).
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "procesador" y "unidad central de procesamiento"
o "CPU" se usan indistintamente y se refieren a un dispositivo
que es capaz de leer un programa de una memoria del ordenador (por
ejemplo, ROM u otra memoria del ordenador) y realizar una serie de
etapas según el programa.
Según se utiliza en el presente documento, la
numeración de los residuos de aminoácidos en una cadena pesada de
inmunoglobulina usa el formato del índice de EU como en Kabat y
col., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5º Ed.
Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD
(1991). El "formato del índice EU como en Kabat" se refiere a
la numeración de los residuos del anticuerpo EU IgG1 humano.
Según se utiliza en el presente documento un
"polipéptido original" es un polipéptido que comprende una
secuencia de aminoácidos que puede cambiarse o alterarse (por
ejemplo, se realiza una sustitución, una adición o una deleción de
aminoácidos) para producir una variante. En formas de realización de
preferencia, el polipéptido original comprende al menos una porción
de una región Fc que se presenta en la naturaleza o de una región
Fc con modificaciones de la secuencia de aminoácidos (por ejemplo,
adiciones, deleciones y/o sustituciones). En algunas formas de
realización, están específicamente contempladas las variantes que
son más cortas o más largas que el polipéptido original. En formas
de realización particularmente de preferencia, el polipéptido
original difiere en la función (por ejemplo, función de efector,
unión, etc.) comparado con una variante.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "variante de un polipéptido original" se refiere a un
péptido que comprende una secuencia de aminoácidos que difiere de la
del polipéptido original en al menos una modificación de
aminoácidos. En ciertas formas de realización, la variante comprende
al menos una porción de una región Fc (por ejemplo, al menos el
40%, el 50%, el 75% o el 90% de una región Fc). En formas de
realización de preferencia, la variante comprende una región Fc de
un polipéptido original con al menos una modificación de
aminoácidos.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "región Fc" se refiere una región C terminal de una
cadena pesada de inmunoglobulina (por ejemplo, según se muestra en
la Figura 1). La "región Fc" puede ser una región Fc de la
secuencia nativa o una región Fc variante. Aunque los límites
generalmente aceptados de la región Fc de una cadena pesada de
inmunoglobulina podrían variar, se define generalmente que la región
Fc de la cadena pesada de IgG humana se extiende desde un residuo
de aminoácido en la posición Cys226, o desde Pro230, hasta el
extremo carboxilo terminal de la misma. En algunas formas de
realización, las variantes comprenden solamente porciones de la
región Fc y pueden o no incluir el extremo carboxilo terminal. La
región Fc de una inmunoglobulina comprende generalmente dos
dominios constantes, CH2 y CH3. En algunas formas de realización,
están contempladas las variantes que tienen uno o más de los
dominios constantes. En otras formas de realización, están
contempladas las variantes sin tales dominios constantes (o con sólo
porciones de tales dominios constantes).
Según se utiliza en el presente documento, el
"dominio CH2" (también denominado dominio "C\gamma2")
comprende por lo general la extensión de residuos que va desde
aproximadamente el aminoácido 231 hasta aproximadamente el
aminoácido 340 en una región Fc (por ejemplo en la región Fc de la
IgG humana). El dominio CH2 es único en que no está apareado
estrechamente con otro dominio. Más bien, dos cadenas de hidratos de
carbono ramificadas unidas por N se interponen entre los dos
dominios CH2 de una molécula de IgG nativa intacta.
Según se utiliza en el presente documento, "el
dominio CH3" (también denominado dominio "C\gamma3")
comprende por lo general la extensión de los residuos del extremo C
terminal a un dominio CH2 en una región Fc (por ejemplo, desde
aproximadamente el residuo de aminoácido 341 hasta aproximadamente
el residuo de aminoácido 447 de una región Fc de IgG humana).
Según se utiliza en el presente documento, una
región Fc puede tener "funciones de efector" que son
responsables de activar o disminuir una actividad biológica (por
ejemplo en un sujeto). Los ejemplos de las funciones de efector
incluyen, pero no se limitan a: unión de C1q; citotoxicidad
dependiente del complemento (CDC); unión del receptor de Fc;
citotoxicidad mediada por células dependiente de anticuerpos (ADCC);
fagocitosis; regulación negativa de los receptores de la superficie
celular (por ejemplo, receptor de células B; BCR), etc. Tales
funciones de efector pueden requerir que la región Fc se combine con
un dominio de unión (por ejemplo un dominio variable del
anticuerpo) y pueden evaluarse usando diversos ensayos (por ejemplo
ensayo de unión de Fc, ensayos de ADCC, ensayo de CDC, depleción de
células diana de muestras de sangre entera o fraccionada, etc.).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "región Fc de secuencia nativa" o "región Fc de tipo
natural" se refiere a una secuencia de aminoácidos que es
idéntica a la secuencia de aminoácidos de una región Fc que se
encuentra comúnmente en la naturaleza. Las regiones Fc humanas de
secuencia nativa de ejemplo incluyen una región Fc de IgG1 humana
de secuencia nativa (alotipos f y a,z); región Fc de IgG2 humana de
secuencia nativa; región Fc de IgG3 humana de secuencia nativa; y
región Fc de IgG4 humana de secuencia nativa así como sus variantes
que se presentan en la naturaleza. Están contempladas otras
secuencias y pueden obtenerse fácilmente de diversos sitios web
(por ejemplo, del sitio web de NCBI).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "región Fc variante" se refiere a la secuencia de
aminoácidos que difiere de la de una región Fc de secuencia nativa
(o sus porciones) en virtud de al menos una modificación de
aminoácidos (por ejemplo, sustitución, inserción o deleción),
incluyendo las variantes heterodiméricas en las que las secuencias
de las subunidades de cadena pesada pueden diferir una de la otra.
En formas de realización de preferencia, la región Fc variante
tiene al menos una sustitución de aminoácidos comparada con una
región Fc de secuencia nativa (por ejemplo desde aproximadamente una
hasta aproximadamente diez sustituciones de aminoácidos, y de
preferencia desde aproximadamente una hasta aproximadamente cinco
sustituciones de aminoácidos en una región Fc de secuencia nativa).
En formas de realización de preferencia, las regiones Fc variantes
tendrán al menos aproximadamente 80% de homología con una región Fc
de secuencia nativa, de preferencia al menos aproximadamente 90% de
homología, y de más preferencia al menos aproximadamente 95% de
homología.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "homología", cuando se usa con referencia a las
secuencias de aminoácidos, se refiere al porcentaje de residuos en
una variante de la secuencia de aminoácidos que son idénticos con
la secuencia de aminoácidos nativa tras alinear las secuencias e
introducir huecos, de ser necesario, para conseguir el máximo
porcentaje de homología.
El término "polipéptido que contiene la región
Fc" se refiere a un polipéptido, tal como un anticuerpo o una
inmunoadhesina (véase las definiciones a continuación), que
comprende una región Fc.
Los términos "receptor de Fc" y "FcR"
se usan para describir un receptor que se une a una región Fc (por
ejemplo, la región Fc de un anticuerpo o fragmento de anticuerpo).
El término incluye el receptor neonatal, FcRn, que es responsable
de la transferencia de las IgG maternas al feto.
Según se utiliza en el presente documento, la
frase "citotoxicidad mediada por células dependiente de
anticuerpos" y "ADCC" se refieren a una reacción mediada
por células en la que las células citotóxicas (por ejemplo, no
específicas) que expresan los FcR (por ejemplo, las células asesinas
naturales (NK), los neutrófilos y los macrófagos) reconocen el
anticuerpo unido en una célula diana y provocan posteriormente la
lisis de las células diana. Las células principales para mediar la
ADCC, las células NK, expresan Fc\gammaRIII, mientras que los
monocitos expresan Fc\gammaRI, Fc\gammaRII y Fc\gammaRIII.
Según se utiliza en el presente documento, la
frase "células efectoras" se refiere a los leucocitos que
expresan uno o más FcR y llevan a cabo funciones de efector. De
preferencia, las células expresan al menos Fc\gammaRIII y llevan
a cabo una función de efector de la ADCC. Los ejemplos de leucocitos
que median la ADCC incluyen las células mononucleares de la sangre
periférica (PBMC), las células asesinas naturales (NK), los
monocitos, las células T citotóxicas y los neutrófilos. Las células
efectoras pueden aislarse de una fuente nativa (por ejemplo de
sangre).
Según se utiliza en el presente documento, la
frase "sangre entera" se refiere a muestras de sangre no
fraccionada.
Según se utiliza en el presente documento, una
variante de polipéptido con afinidad de unión de FcR o la actividad
de ADCC "alterada" es una que tiene actividad de unión de FcR
y/o actividad de ADCC aumentada (es decir incrementada) o
disminuida (es decir reducida) comparada con un polipéptido original
o con un polipéptido que comprende una región Fc de la secuencia
nativa. Una variante de polipéptido que "exhibe unión
aumentada" a un FcR une al menos un FcR con mejor afinidad que
el polipéptido original. Una variante de polipéptido que "exhibe
unión disminuida" a un FcR, une al menos un FcR con peor
afinidad que el polipéptido original. Tales variantes que exhiben
unión disminuida a un FcR pueden tener poca unión o unión no
apreciable a un FcR, por ejemplo, 0-20% de unión al
FcR comparado con un polipéptido original. Una variante de
polipéptido que une un FcR con "mejor afinidad" que un
polipéptido original, es una que une uno o más de los FcR
identificados anteriormente con mayor afinidad de unión que el
anticuerpo original, cuando las cantidades de variante de
polipéptido y polipéptido original en un ensayo de unión son
esencialmente las mismas, y todas las otras condiciones son
idénticas. Por ejemplo, una variante de polipéptido con mejor
afinidad de unión de FcR puede exhibir una mejora (es decir
aumento) de desde aproximadamente 1,10 veces hasta aproximadamente
100 veces (más típicamente desde aproximadamente 1,2 veces hasta
aproximadamente 50 veces) en la afinidad de unión de FcR comparado
con el polipéptido original, donde la afinidad de unión de FcR se
determina, por ejemplo, en un ensayo ELISA.
Según se utiliza en el presente documento, una
"modificación de aminoácido" se refiere a un cambio en la
secuencia de aminoácidos de una secuencia de aminoácidos dada. Las
modificaciones de ejemplo incluyen, pero no se limitan a, una
sustitución, inserción y/o deleción de aminoácidos. En formas de
realización de preferencia, la modificación de aminoácidos es una
sustitución (por ejemplo en una región Fc de un polipéptido
original).
Según se utiliza en el presente documento, una
"modificación del aminoácido en" una posición especificada
(por ejemplo en la región Fc) se refiere a la sustitución o deleción
de residuo especificado, o la inserción de al menos de un residuo
de aminoácido adyacente al residuo especificado. Por inserción
"adyacente" a un residuo especificado se entiende la inserción
dentro de uno a dos de sus residuos. La inserción puede ser en el
extremo N-terminal o C-terminal al
residuo especificado.
Según se utiliza en el presente documento, una
"sustitución de aminoácidos" se refiere al reemplazo de al
menos un residuo de aminoácido existente en una secuencia de
aminoácidos dada con otro residuo de aminoácido diferente de
"reemplazo". El residuo o residuos de reemplazo pueden ser
"residuos de aminoácido que se presentan en la naturaleza" (es
decir codificados por el código genético) y pueden seleccionarse de:
alanina (Ala); arginina (Arg); asparagina (Asn); ácido aspártico
(ASP); cisteína (Cys); glutamina (Gln); ácido glutámico (Glu);
glicina (Gly); histidina (Gys); isoleucina (Ile); leucina (Leu);
lisina (Lys); metionina (Met); fenilalanina (Phe); prolina (Pro);
serina (Ser); treonina (Thr); triptofano (Trp); tirosina (Tyr); y
valina (Val). La sustitución con uno o más residuos de aminoácido
que no se presentan en la naturaleza también está incluida por la
definición de una sustitución de aminoácidos en el presente
documento. Un "residuo de aminoácido que no se presentan en la
naturaleza" se refiere a un residuo, diferente de los residuos de
aminoácidos que se presentan en la naturaleza presentados
anteriormente, que es capaz de unirse de manera covalente en
posición adyacente a los residuos de aminoácidos en una cadena de
polipéptidos. Los ejemplos de residuos de aminoácidos que no se
presentan en la naturaleza incluyen norleucina, ornitina,
norvalina, homoserina y otros residuos de aminoácido análogos tales
como los descritos en Ellman y col. Meth. Enzym. 202:
301-336 (1991).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "inserción de aminoácidos" se refiere a la
incorporación de al menos un aminoácido en una secuencia de
aminoácidos dada. En formas de realización de preferencia, una
inserción será usualmente la inserción de uno o dos residuos de
aminoácidos. En otras formas de realización, la inserción incluye
inserciones de péptidos mayores (por ejemplo la inserción de
aproximadamente tres hasta aproximadamente cinco o incluso hasta
aproximadamente diez residuos de aminoácidos).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "deleción de aminoácidos" se refiere a la eliminación
de al menos un residuo de aminoácido de una secuencia de aminoácidos
dada.
El término "señal de ensayo" se refiere a
la señal de salida de cualquier procedimiento de detección de
interacciones proteína-proteína, incluidos pero no
limitados a, mediciones de absorbancia de ensayos colorimétricos,
intensidad fluorescente, o desintegraciones por minuto. El formato
del ensayo puede incluir procedimientos ELISA, facs, u otros
procedimientos. Un cambio en la "señal de ensayo" puede
reflejar un cambio en la viabilidad celular y/o un cambio en la
cinética de disociación, en la cinética de asociación, o ambas. Una
"señal de ensayo más elevada" se refiere al número de la señal
de salida medido que es mayor que otro número (por ejemplo una
variante puede tener un número medido más elevado (mayor) en un
ensayo ELISA comparado con el polipéptido original). Una señal de
ensayo "más baja" se refiere al número de la señal de la salida
medido que es más pequeño que otro número (por ejemplo una
variante
puede tener un número medido más bajo (más pequeño) en un ensayo ELISA comparado con el polipéptido original).
puede tener un número medido más bajo (más pequeño) en un ensayo ELISA comparado con el polipéptido original).
El término "afinidad de unión" se refiere a
la constante de equilibrio de disociación (expresada en unidades de
concentración) asociada con cada interacción de unión entre el
receptor de Fc y Fc. La afinidad de unión está directamente
relacionada con la relación de la cinética de disociación (informada
generalmente en unidades de inversa del tiempo, por ejemplo
segundos^{-1}) dividida por la cinética de asociación
(generalmente informada en unidades de concentración por unidad de
tiempo, por ejemplo molar / segundo). En general no es posible
establecer de manera inequívoca si los cambios en las constantes de
equilibrio de disociación se deben a diferencias en las
asociaciones, disociaciones o a ambas, a menos que se determinen
experimentalmente estos parámetros (por ejemplo, por medio de
mediciones BIACORE o SAPIDYNE).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "región de bisagra" se refiere a la extensión de
aminoácidos en la IgC1 humana que se extiende desde Glu216 hasta
Pro230 de la IgG1 humana. Las regiones de bisagra de otros isotipos
de IgG pueden alinearse con la secuencia de IgG1 colocando el primer
y último residuo cisteína que forman enlaces S-S
entre las cadenas pesadas en las mismas posiciones.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "región de bisagra inferior" de una región Fc se
refiere a la extensión de residuos de aminoácidos en posición
inmediatamente C-terminal a la región de bisagra
(por ejemplo los residuos 233 a 239 de la región Fc de IgG1).
"C1q" es un polipéptido que incluye un
sitio de unión para la región Fc de una inmunoglobulina. C1q junto
con dos serina proteasas, C1r y C1s, forma el complejo C1, el primer
componente de la vía de la citotoxicidad dependiente del
complemento (CDC).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "anticuerpo" se usa en el sentido más amplio y cubre
específicamente los anticuerpos monoclonales (incluidos los
anticuerpos monoclonales de longitud total), los anticuerpos
policlonales, los anticuerpos multiespecíficos (por ejemplo,
anticuerpos biespecíficos), y los fragmentos de anticuerpos siempre
que exhiban la actividad biológica deseada.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "fragmentos de anticuerpo" se refiere a una porción de
un anticuerpo intacto. Los ejemplos de fragmentos de anticuerpo
incluyen, pero no se limitan a, anticuerpos lineales; moléculas de
anticuerpos de cadena única; péptidos Fc o de Fc', Fab y fragmentos
de Fab, y anticuerpos multiespecíficos formados a partir de
fragmentos de anticuerpos. Los fragmentos de anticuerpos conservan
de preferencia al menos parte de la bisagra y opcionalmente la
región CH1 de una cadena pesada de IgG. En otras formas de
realización de preferencia, los fragmentos de anticuerpo comprenden
al menos una porción de la región CH2 o la región CH2 completa.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "fragmento funcional", cuando se usa con referencia a
un anticuerpo monoclonal, tiene la intención de referirse a una
porción del anticuerpo monoclonal que todavía conserva una
actividad funcional. Una actividad funcional puede ser, por ejemplo,
la actividad o especificidad de unión al antígeno. Los fragmentos
funcionales de los anticuerpos monoclonales incluyen, por ejemplo,
cadenas pesadas o ligeras individuales o sus fragmentos, tales como
VL, VH y Fd; fragmentos monovalentes, tales como Fv, Fab, y Fab';
fragmentos bivalentes tales como F(ab')_{2}; Fv de cadena
única (scFv); y fragmentos de Fc. Tales términos están descritos
en, por ejemplo, Harlowe and Lane, Antibodies: A Laboratory Manual,
Cold Spring Harbor Laboratory, Nueva York (1989); Molec. Biology
and Biotechnology: A Comprehensive Desk Reference (Myers, R.A.
(ed.), Nueva York: VCH Publisher, Inc.); Huston y col., Cell
Biophysics, 22:189-224 (1993); Pluckthun and
Skerra, Meth. Enzymol., 178:497-515 (1989) y en Day,
E.D., Advanced Immunochemistry, Second Ed.,
Wiley-Liss, Inc., Nueva York, NY (1990). El término
fragmento funcional tiene la intención de incluir, por ejemplo, los
fragmentos producidos por digestión con proteasas o reducción de un
anticuerpo monoclonal y por medio de procedimientos de ADN
recombinante conocidos por los expertos en la técnica.
Según se utiliza en el presente documento, las
formas "humanizadas" de anticuerpos no humanos (por ejemplo,
murinos) son anticuerpos que contienen secuencias mínimas, o ninguna
secuencia, derivada de inmunoglobulina no humana. En su mayoría,
los anticuerpos humanizados son inmunoglobulinas humanas (anticuerpo
receptor) en los que los residuos de una región hipervariable del
receptor están reemplazados por los residuos de una región
hipervariable de la especie no humana (anticuerpo donador) tales
como ratón, rata, conejo o primate no humano que tiene la
especificidad, afinidad, y capacidad deseadas. En algunos casos, se
reemplazan los residuos de la región marco estructural de Fv (FR)
de la inmunoglobulina humana por los residuos no humanos
correspondientes. Además, los anticuerpos humanizados pueden
comprender residuos que no se encuentran en el anticuerpo receptor
o en el anticuerpo donador. Estas modificaciones se realizan por lo
general para refinar más el rendimiento del anticuerpo. En general
el anticuerpo humanizado comprenderá substancialmente todos de al
menos uno, y típicamente dos, dominios variables, en los que todos
o substancialmente todos los bucles hipervariables corresponden a
los de una inmunoglobulina no humana y todos o substancialmente
todos los residuos FR son los de una secuencia de inmunoglobulina
humana. El anticuerpo humanizado puede también comprender al menos
una porción de una región constante (Fc) de inmunoglobulina,
típicamente la de una inmunoglobulina humana. Los ejemplos de
procedimientos usados para generar anticuerpos humanizados están
descritos en la Patente de EEUU 5.225.539 de Winter y col.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "región hipervariable" se refiere a los residuos de
aminoácidos de un anticuerpo que son responsables de la unión del
antígeno. La región hipervariable comprende residuos de aminoácidos
de una "región determinante de complementariedad" o "CDR"
(es decir los residuos 24-34 (L1),
50-56 (L2) y 89-97 (L3) en el
dominio variable de la cadena ligera y 31-35 (H1),
50-65 (H2) y 95-102 (H3) en el
dominio variable de la cadena pesada; Kabat y col., Sequences of
Proteins of Immunological Interest, 5th Ed. Public Health Service,
National Institutes of Health, Bethesda, MD. (1991)), y/o los
residuos de un "bucle hipervariable" (es decir los residuos
26-32 (L1), 50-52 (L2) y
91-96 (L3) en el dominio variable de la cadena
ligera y 26-32 (H1), 53-55 (H2) y
96-101 (H3) en el dominio variable de la cadena
pesada; Chothia and Lesk J. Mol. Biol. 196: 901-917
(1987)). Los residuos del "marco estructural" o "FR" son
los residuos del dominio variable diferentes de los residuos de la
región hipervariable según se definió en el presente documento.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "inmunoadhesina" designa las moléculas análogas a
anticuerpos que combinan el dominio de unión de una proteína
"adhesina" heteróloga (por ejemplo un receptor, ligando o
enzima) con un dominio constante de inmunoglobulina.
Estructuralmente, las inmunoadhesinas comprenden una fusión de la
secuencia de aminoácidos de la adhesina con la especificidad de
unión deseada que es diferente del sitio de reconocimiento y unión
del antígeno (sitio de combinación del antígeno) de un anticuerpo
(es decir es "heterólogo") con una secuencia del dominio
constante de la inmunoglobulina.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "dominio de unión del ligando" se refiere a cualquier
receptor nativo o a cualquier región o derivado del mismo que
conserva al menos una capacidad de unión del ligando cualitativa de
un receptor nativo correspondiente. En ciertas formas de
realización, el receptor es de un polipéptido de superficie celular
que tiene un dominio extracelular que es homólogo a un miembro de
la familia de supergenes de las inmunoglobulinas. Otros receptores,
que no son miembros de la familia de supergenes de las
inmunoglobulinas pero que no obstante están específicamente
cubiertos por esta definición, son los receptores para las
citocinas, y en particular los receptores con actividad tirosina
cinasa (tirosina cinasas receptoras), los miembros de la
superfamilia del receptor de hematopoyetina y del factor de
crecimiento de los nervios, y las moléculas de adhesión celular
(por ejemplo las selectinas E, l, y P).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "dominio de unión del receptor" se refiere a cualquier
ligando nativo para un receptor, incluidas las moléculas de adhesión
celular, o cualquier región o derivado de tal ligando nativo que
conserva al menos una capacidad de unión del receptor cualitativa de
un ligando nativo correspondiente.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "quimera de anticuerpo-inmunoadhesina"
comprende una molécula que combina al menos a un dominio de unión
de un anticuerpo con al menos una inmunoadhesina. Los ejemplos
incluyen, pero no se limitan a, las quimeras biespecíficas
CD4-IgG descritas en Berg y col., PNAS (USA) 88:
4723-4727 (1991) y Chamow y col., J. Immunol., 153:
4268 (1994).
Según se utiliza en el presente documento, un
polipéptido "aislado" es uno que se ha identificado y se ha
separado y/o se ha recuperado de un componente de su entorno
natural. Los componentes contaminantes de su entorno natural son
materiales que podrían interferir con los usos terapéuticos o de
diagnóstico para el polipéptido, y pueden incluir enzimas, hormonas
y otros solutos proteicos o no proteicos. En ciertas formas de
realización, el polipéptido aislado está purificado (1) hasta más
del 95% en peso de los polipéptidos según se determina por el
método de Lowry, y de preferencia, más del 99% en peso, (2) hasta un
grado suficiente para obtener al menos 15 residuos de la secuencia
de aminoácidos N-terminal o interna por medio del
uso de un secuenciador de copa giratoria, o (3) hasta homogeneidad
por SDS-page bajo condiciones reductoras o no
reductoras usando azul de Coomassie, o azul de plata. El
polipéptido aislado incluye el polipéptido in situ dentro de células
recombinantes ya que al menos un componente del entorno natural del
polipéptido no estará presente. Sin embargo, por lo general, el
polipéptido aislado se preparará por medio de al menos una etapa de
purificación.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "tratamiento" se refiere tanto al tratamiento
terapéutico como a las medidas profilácticas o preventivas. Los que
necesitan tratamiento incluyen aquellos que ya tienen el trastorno
así como aquellos en los que debe prevenirse el trastorno.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "trastorno" se refiere a cualquier afección que podría
beneficiarse del tratamiento con una variante de polipéptido,
incluidos trastornos o enfermedades crónicos y agudos (por ejemplo
afecciones patológicas que predisponen a un paciente para un
trastorno particular). En ciertas formas de realización, el
trastorno es el cáncer.
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "cáncer" y "canceroso" describen o se refieren a
la afección fisiológica en los mamíferos que está caracterizada
típicamente por el crecimiento celular no regulado. Los ejemplos
del cáncer incluyen, pero no se limitan a, carcinoma, linfoma,
blastoma, sarcoma, y leucemia. Los ejemplos más particulares de
tales cánceres incluyen el cáncer de células escamosas, el cáncer de
pulmón microcítico, el cáncer de pulmón no microcítico, el
adenocarcinoma de pulmón, el carcinoma escamoso de pulmón, el
cáncer del peritoneo, el cáncer hepatocelular, el cáncer
gastrointestinal, el cáncer pancreático, el glioblastoma, el cáncer
cervical, el cáncer de ovario, el cáncer de hígado, el cáncer de
vejiga, el hepatoma, el cáncer de mama, el cáncer de colon, el
cáncer colorrectal, el carcinoma endometrial o uterino, el carcinoma
de las glándulas salivares, el cáncer de riñón, el cáncer de
hígado, el cáncer de próstata, el cáncer vulvar, el cáncer de
tiroides, el carcinoma hepático y diversos tipos de cáncer de cabeza
y cuello.
Según se utiliza en el presente documento, la
frase "cáncer que expresa HER2" es uno que comprende células
que tienen la proteína del receptor HER2 (por ejemplo, Número de
acceso de Genebank X03363) presente en su superficie celular, tal
que un anticuerpo anti-HER2 es capaz de unirse al
cáncer.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "marcador" se refiere a un compuesto o composición
detectable que está conjugado directa o indirectamente a un
polipéptido. El marcador puede ser detectable por sí mismo (por
ejemplo, marcadores de radioisótopos o marcadores fluorescentes) o,
en el caso de un marcador enzimático, pueden catalizar la
alteración química de un compuesto o composición substrato que es
detectable.
Según se utiliza en el presente documento, los
términos "elemento de control", "secuencia de control" y
"elemento regulador" se refieren a un elemento genético que
controla algunos aspectos de la expresión de las secuencias de
ácidos nucleicos. Por ejemplo, un promotor es un elemento regulador
que facilita la iniciación de la transcripción de una región
codificadora unida de manera operativa. Otros elementos reguladores
incluyen señales de empalme, señales de poliadenilación, señales de
terminación, etc. Los elementos de control que son adecuados para
los procariotas, por ejemplo, incluyen un promotor, opcionalmente
una secuencia de operador, y un sitio de unión de ribosomas. Se
sabe que las células eucariotas utilizan promotores, señales de
poliadenilación, y potenciadores.
Según se utiliza en el presente documento, el
ácido nucleico está "unido de manera operativa" cuando se
coloca en una relación funcional con otra secuencia de ácido
nucleico. Por ejemplo, el ADN de una secuencia previa o de un líder
secretor está unido de manera operativa a un ADN para un polipéptido
si se expresa como una preproteína que participa en la secreción
del polipéptido; un promotor o potenciador está unido de manera
operativa a una secuencia codificadora si afecta a transcripción de
la secuencia; o un sitio de unión de ribosomas está unido de manera
operativa a una secuencia codificadora si está posicionado para
facilitar la traducción. En formas de realización de preferencia,
"unido de manera operativa" significa que las secuencias de ADN
unidas son contiguas, y, en el caso de un líder secretor, contiguas
y en el marco de lectura. Sin embargo los potenciadores, por
ejemplo, no tienen que ser contiguos. El enlace puede llevarse a
cabo, por ejemplo, por unión de sitios de restricción convenientes.
Si tales sitios no existen, pueden usarse adaptadores o conectores
de oligonucleótidos sintéticos según la práctica convencional.
Según se utiliza en el presente documento, las
expresiones "célula", "línea celular" y "cultivo
celular" se usan indistintamente y tales denominaciones incluyen
todas la progenie. Por consiguiente, las palabras
"transformantes" y "células transformadas" incluyen la
célula primaria y los cultivos derivados de la misma
independientemente del número de transferencias. También se
entiende que toda la progenie puede no ser precisamente idéntica en
el contenido de ADN, por mutaciones deliberadas o involuntarias. Se
incluye la progenie mutante que tiene la misma función o actividad
biológica tal como se identificó en la célula originalmente
transformada. Cuando se tenga la intención de realizar
denominaciones distintas, resultará claro a partir del contexto.
Según se utiliza en el presente documento,
"analito" se refiere a una sustancia que se va a analizada. El
analito de preferencia es una región Fc que contiene el polipéptido,
en la que se va a analizar la capacidad para unirse a un receptor
de Fc.
Según se utiliza en el presente documento, el
término "receptor" se refiere a un polipéptido capaz de unir
al menos un ligando. El receptor de preferencia es un receptor de
superficie celular o soluble que tiene un dominio extracelular de
unión al ligando y, opcionalmente, otros dominios (por ejemplo
dominio transmembranario, dominio intracelular y/o anclaje de
membrana). Un receptor a evaluarse en un ensayo descrito en el
presente documento puede ser un receptor intacto o uno de sus
fragmentos o derivados (por ejemplo una proteína de fusión que
comprende el dominio de unión del receptor fusionado a unos o más
polipéptidos heterólogos). Además, el receptor en el que se
evaluarán las propiedades de unión puede estar presente en una
célula o puede estar aislado y opcionalmente recubierto en una
placa de ensayo u otra fase sólida o puede marcarse directamente y
usarse como una sonda.
Según se utiliza en el presente documento, la
frase "polipéptido expresado en CHO" se refiere a un
polipéptido que se ha expresado de manera recombinante en células
del ovario de hámster chino (CHO).
Según se utiliza en el presente documento, el
término "enfermedad sensible a anticuerpos" se refiere a
cualquier enfermedad o afección médica que se muestra que es
tratable, al menos en parte, con terapia de anticuerpos. Los
ejemplos de tales enfermedades y afecciones médicas incluyen, pero
son no se limitan a, linfoma (que se muestra que es tratable con
RITUXAN), enfermedad infecciosa (que se muestra que es tratable con
SYNAGIS), el transplante renal (el ZENAPAX ha mostrado ser útil),
la enfermedad de Crohn y la artritis reumatoide (que se muestra que
es tratable con REMICADE), el carcinoma de mama (que se muestra que
es tratable con HERCEPTIN), y el cáncer del colon (que se muestra
que es tratable con EDRECOLOMAB). Según se utiliza en el presente
documento, el término "enfermedad sensible a las
inmunoadhesinas" se refiere a cualquier enfermedad o afección
médica que se muestra que es tratable, al menos en parte, con
terapia de inmunoadhesinas.
Según se utiliza en el presente documento una
variante de polipéptido que "media la citotoxicidad mediada por
células dependiente de anticuerpos (ADCC) en presencia de células
efectoras humanas más eficazmente" que un anticuerpo original es
uno que, in vitro o in vivo, es substancialmente más
eficaz para mediar la ADCC, cuando las cantidades de variante de
polipéptido y anticuerpo original usadas en el ensayo son
esencialmente las mismas. Por ejemplo, una de tales variantes causa
una mayor cantidad de lisis de células diana en un ensayo de ADCC
dado que el polipéptido original en un ensayo de ADCC idéntico.
Tales variantes pueden identificarse, por ejemplo, usando un ensayo
de ADCC, pero pueden utilizarse también otros ensayos o
procedimientos para determinar la actividad de ADCC (por ejemplo
modelos animales). En formas de realización de preferencia, la
variante de polipéptido es desde aproximadamente 1,2 veces, 1,5
veces, 50 veces, 100 veces, aproximadamente 500 veces, o
aproximadamente 1000 veces más eficaz para mediar la ADCC que el
polipéptido original.
Según se utiliza en el presente documento, una
variante del polipéptido que "media la depleción de células B
dependiente de anticuerpos de la sangre entera de manera más
eficaz" que el anticuerpo original es una que, in vitro o
in vivo es substancialmente más eficaz para mediar la
depleción de células B, cuando las cantidades de variante de
polipéptido y anticuerpo original usadas en el ensayo son
esencialmente las mismas. Por ejemplo, una de tales variantes causa
un mayor grado de depleción de células B en un ensayo dado que el
polipéptido original en un ensayo idéntico. También, tales
variantes pueden deplecionar células B en el mismo grado pero en
concentraciones más bajas que las necesarias del polipéptido
original en un ensayo idéntico. Tales variantes pueden
identificarse, por ejemplo, usando un ensayo de ADCC, pero pueden
utilizarse también otros ensayos o procedimientos para determinar
la actividad de ADCC (por ejemplo modelos animales). En formas de
realización de preferencia, el aumento en la depleción relativa al
polipéptido original es independiente del genotipo de FcRIIIa en la
posición 158 (V o F) y del genotipo de FcRIIa en la posición 131 (H
o R), y la variante de polipéptido es desde aproximadamente 1,2
veces, 1,5 veces, 50 veces, 100 veces, aproximadamente 500 veces, o
aproximadamente 1000 veces más eficaz para mediar la depleción de
células B que el polipéptido original.
El término "síntomas de una enfermedad
sensible a anticuerpos o inmunoadhesinas" se refiere a los
síntomas generalmente asociados con una enfermedad particular. Por
ejemplo, los síntomas normalmente asociados con la enfermedad de
Crohn incluyen: dolor abdominal, diarrea, hemorragia rectal, pérdida
de peso, fiebre, pérdida del apetito, deshidratación, anemia,
distensión, fibrosis, intestinos inflamados y desnutrición.
La frase "bajo condiciones tales que se
reduzcan los síntomas" se refiere a cualquier grado de reducción
cualitativa o cuantitativa en los síntomas detectables de una
enfermedad sensible a anticuerpos o inmunoadhesinas, incluidos pero
no limitados a, un impacto detectable en la tasa de recuperación de
la enfermedad (por ejemplo tasa de ganancia de peso), o la
reducción de al menos uno de los síntomas normalmente asociados con
la enfermedad particular (por ejemplo, si la enfermedad sensible a
anticuerpos o inmunoadhesinas fuera la enfermedad de Crohn, una
reducción en al menos uno de los siguientes síntomas: dolor
abdominal, diarrea, hemorragia rectal, pérdida de peso, fiebre,
pérdida del apetito, deshidratación, anemia, distensión, fibrosis,
intestinos inflamados y desnutrición).
La presente invención proporciona variantes de
polipéptidos de la región Fc y oligonucleótidos que codifican las
variantes de la región Fc. Específicamente, la presente invención
proporciona composiciones que comprenden variantes de la región Fc
nuevas, procedimientos para identificar variantes de la región Fc
útiles, y procedimientos para utilizar las variantes de la región
Fc para tratar enfermedades. La descripción de la invención se
proporciona a continuación en las siguientes secciones: I.)
Regiones Fc del anticuerpo; II.) Regiones Fc variantes; III. )
Variantes de combinación; IV.) Ensayos de polipéptidos variantes;
V.) Moléculas de ejemplo que contienen región Fc variante; VI.)
Secuencias nucleicas que codifican variantes de la región Fc; VII.)
Usos terapéuticos y formulaciones;
VIII.) Otros usos de las regiones Fc variantes.
VIII.) Otros usos de las regiones Fc variantes.
Según se describió anteriormente, los
anticuerpos tienen regiones, principalmente las regiones CH2 y CH3,
que están involucradas en funciones diferentes de la unión al
antígeno. Juntas, estas regiones se conocen generalmente como la
región Fc, y tienen varias funciones efectoras mediadas por la unión
de moléculas efectoras.
Las funciones efectoras mediadas por la región
Fc del anticuerpo pueden dividirse en dos categorías: (1) funciones
efectoras que actúan tras la unión del anticuerpo a un antígeno
(estas funciones implican, por ejemplo, la participación de la
cascada del complemento o de células que llevan receptores de Fc
(FcR)); y (2) funciones efectoras que actúan independientemente de
la unión al antígeno (estas funciones confieren, por ejemplo,
persistencia en el circulación y la capacidad de transferirse a
través de barreras celulares por medio de transcitosis). Por
ejemplo, la unión del componente C1 del complemento a los
anticuerpos activa el sistema del complemento. Tras la
opsonización, la activación del complemento es importante en la
lisis de los patógenos celulares. La activación del complemento
estimula también la respuesta inflamatoria y puede estar también
involucrada en la hipersensibilidad autoinmune. Además, los
anticuerpos se unen a las células a través de la región Fc, con un
sitio de unión al receptor de Fc en la región Fc del anticuerpo que
se une a un receptor de Fc (FcR) en una célula. Existe una serie de
receptores de Fc que son específicos para diferentes clases de
anticuerpo, incluidos IgG (receptores gamma), IgE (receptores eta),
IgA (receptores alfa) e IgM (receptores mu). Aunque la presente
invención no está limitada a ningún mecanismo particular, la unión
del anticuerpo a los receptores de Fc en las superficies celulares
provoca una serie de respuestas biológicas importantes y diversas
que incluyen el engolfamiento y la destrucción de partículas
recubiertas de anticuerpos, el aclaramiento de complejos inmunes,
la lisis de células diana recubiertas de anticuerpos por medio de
células asesinas (llamada citotoxicidad mediada por células
dependiente de anticuerpos, o ADCC), la liberación de mediadores
inflamatorios, la transferencia placentaria y el control de la
producción de inmunoglobulinas.
Varias funciones efectoras de los anticuerpos
están mediadas por receptores de Fc (FcRs), que se unen a la región
Fc de un anticuerpo. Los FcRs se definen por su especificidad por
isotipos de inmunoglobulinas; los receptores de Fc para anticuerpos
IgG se denominan Fc\gammaR, para IgE se denominan
Fc\varepsilonR, para IgA se denominan Fc\alphaR y así
sucesivamente. Se han identificado tres subclases de Fc\gammaR:
Fc\gammaRI (CD64), Fc\gammaRII (CD32) y Fc\gammaRIII
(CD16).
Como cada subclase de Fc\gammaR está
codificada por dos o tres genes, y el empalme alternativo de ARN da
lugar a múltiples transcriptos, existe una amplia diversidad en las
isoformas de Fc\gammaR. Los tres genes que codifican la subclase
Fc\gammaRI (Fc\gammaRIA, Fc\gammaRIB y Fc\gammaRIC) están
agrupados en la región 1q21.1 del brazo largo del cromosoma 1; los
genes que codifican las isoformas de Fc\gammaRII (Fc\gammaRIIA,
Fc\gammaRIIB y Fc\gammaRIIC) y los dos genes que codifican
Fc\gammaRIII (Fc\gammaRIIIA y Fc\gammaRIIIB) están todos
agrupados en la región 1q22. Estos subtipos de FcR diferentes se
expresan en diferentes tipos celulares (véase, por ejemplo, Ravetch
and Kinet, Annu. Rev. Immunol. 9: 457-492 (1991)).
Por ejemplo, en los seres humanos, Fc\gammaRIIIB se encuentra
solamente en los neutrófilos, mientras que Fc\gammaRIIIA se
encuentra en los macrófagos, monocitos, células asesinas naturales
(NK), y en una subpoblación de células T. Particularmente,
Fc\gammaRIIIA está presente en las células NK, uno de los tipos de
células implicados en la ADCC.
El receptor de Fc\gammaRIIIA (CD16) humano
tiene un polimorfismo común en la posición 158 en su dominio
extracelular que codifica una fenilalanina o una valina en esta
posición. El alelo de V de Fc\gammaRIIIA tiene mayor afinidad
para la IgG1 humana que el alelo F. El alelo V158 también media de
manera más eficaz la ADCC. Los datos clínicos han mostrado una
correlación entre el genotipo del receptor de Fc\gammaRIIIA en
pacientes sometidos a tratamiento con Rituxan y la respuesta
terapéutica. Se ha mostrado que tanto la respuesta clínica y
molecular como el tiempo hasta la progresión es superior en los
pacientes homocigotas para el genotipo
Fc\gammaRIIIA-158V (aproximadamente el 20% de la
población). En cambio, los pacientes heterocigotas u homocigotas
para el genotipo Fc\gammaRIIIA-158F de menor
afinidad (aproximadamente el 80% de la población) responden de
manera más pobre. Estos datos sugieren que las mutaciones de Fc que
aumentan la actividad ADCC de los portadores de 158F podría
aumentar la eficacia clínica de la terapia para el cáncer basada en
anticuerpos. También está presente un polimorfismo genético en el
receptor de Fc\gammaRIIA (CD32) humano en la posición 131 en su
dominio extracelular que codifica una histidina (H) o una arginina
(R) en esta posición. Se ha encontrado que el polimorfismo en la
posición 131 afecta su capacidad para unirse a la IgG humana. Datos
recientes también muestran una correlación entre el polimorfismo en
la posición 131 de Fc\gammaRIIA y la respuesta clínica al
Rituxan. Los pacientes homocigotas para el alelo de H131 tienen una
tasa de respuesta significativamente más alta que los otros 2
grupos.
Fc\gammaRI, de Fc\gammaRII y de
Fc\gammaRIII son receptores de la superfamilia de inmunoglobulinas
(IgSF); Fc\gammaRI tiene tres dominios de IgSF en su dominio
extracelular, mientras que Fc\gammaRII y Fc\gammaRIII tienen
solo dos dominios de IgSF en sus dominios extracelulares.
Otro tipo de receptor de Fc es el receptor
neonatal de Fc (FcRn). El FcRn es estructuralmente similar al
complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) y está constituido por
una cadena \alpha unida de manera no covalente a la
microglobulina \beta2.
La presente invención proporciona variantes de
polipéptidos, secuencias de ácidos nucleicos que codifican
variantes de polipéptidos y procedimientos para generar variantes de
polipéptidos. De preferencia, las variantes de polipéptidos de la
presente invención difieren de un polipéptido original en al menos
una modificación de aminoácido. El polipéptido "original",
"de tipo natural", "de partida" o "no variante"
comprende de preferencia al menos una porción de una región Fc del
anticuerpo, y puede prepararse usando técnicas disponibles en la
técnica para generar polipéptidos que comprenden una región Fc o una
de sus porciones. En formas de realización de preferencia, el
polipéptido original es un anticuerpo. El polipéptido original
puede, sin embargo, ser cualquier otro polipéptido que comprende al
menos una porción de una región Fc (por ejemplo una inmunoadhesina).
En ciertas formas de realización, una región Fc variante puede
generarse (por ejemplo según los procedimientos divulgados en el
presente documento) y puede fusionarse a un polipéptido heterólogo
de elección, tal como un dominio variable del anticuerpo o un
dominio de unión de un receptor o ligando.
En formas de realización de preferencia, el
polipéptido original comprende una región Fc o una de sus porciones
funcionales. En general, la región Fc del polipéptido original
comprenderá una región Fc de la secuencia nativa, y de preferencia
una región Fc de la secuencia nativa humana. Sin embargo, la región
Fc del polipéptido original puede tener una o más alteraciones o
modificaciones de la secuencia de aminoácidos preexistentes de una
región Fc de la secuencia nativa. Por ejemplo, la actividad de
unión de C1q de la región Fc pudo haberse alterado previamente o la
afinidad de unión de Fc\gammaR de la región Fc pudo haberse
alterado. En otras formas de realización, la región Fc del
polipéptido original es conceptual (por ejemplo representación
mental o una representación visual en un ordenador o en el papel)
y, aunque no existe físicamente, el ingeniero de anticuerpos puede
decidir sobre una secuencia de aminoácidos de la región Fc variante
deseada y puede generar un polipéptido que comprende esa secuencia
o una ADN que codifica la secuencia de aminoácidos de la región Fc
variante deseada. Sin embargo, en formas de realización de
preferencia, está disponible un ácido nucleico que codifica una
región Fc de un polipéptido original y esta secuencia de ácido
nucleico se altera para generar una secuencia de ácido nucleico
variante que codifica la región Fc variante.
El ácido nucleico que codifica una variante del
polipéptido original puede prepararse por medio de procedimientos
conocidos en la técnica usando las pautas de la presente memoria
descriptiva para las secuencias particulares. Estos procedimientos
incluyen, pero no se limitan a, la preparación por mutagénesis
dirigida al sitio (o mediada por oligonucleótidos), la mutagénesis
por PCR, y la mutagénesis de casetes de un ácido nucleico que
codifica el polipéptido preparado previamente. La mutagénesis
dirigida al sitio es un procedimiento de preferencia para preparar
variantes. Esta técnica es bien conocida en la técnica (véase, por
ejemplo, Carter y col. Nucleic. Acids Res. 13:
4431-4443 (1985) y Kunkel y col., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 82: 488 (1987). Brevemente, al llevar a cabo la
mutagénesis del ADN dirigida al sitio, se altera el ADN de partida
hibridando en primer lugar simultáneamente uno o múltiples
oligonucleótidos que codifican la(s) mutación(ones)
deseada(s) con una única hebra de tal ADN de partida. Tras
la hibridación, se usa una ADN polimerasa para sintetizar una
segunda hebra completa, usando el(los)
oligonucleótido(s) hibridado(s)
como un cebador, y usando la hebra única del ADN de partida como un molde y se usa una ADN ligasa para ligar la segunda hebra para formar un ADN circular, de doble hebra. Por consiguiente, el oligonucleótido que codifica la mutación deseada se incorpora en el ADN de doble hebra resultante.
como un cebador, y usando la hebra única del ADN de partida como un molde y se usa una ADN ligasa para ligar la segunda hebra para formar un ADN circular, de doble hebra. Por consiguiente, el oligonucleótido que codifica la mutación deseada se incorpora en el ADN de doble hebra resultante.
La mutagénesis por PCR es también adecuada
producir secuencias de aminoácidos variantes del polipéptido de
partida (véase, por ejemplo, Vallette y col., Nuc. Acids Res. 17:
723-733 (1989)). Brevemente, cuando se usan
pequeñas cantidades de ADN molde como material de partida en una
PCR, pueden usarse cebadores que difieren ligeramente en la
secuencia de la región correspondiente en un ADN molde para generar
cantidades relativamente grandes de un fragmento de ADN específico
que difiere de la secuencia del molde sólo en las posiciones donde
los cebadores difieren del molde.
Otro procedimiento para preparar variantes, la
mutagénesis de casetes, se basa en la técnica descrita de Wells y
col., Gene 34: 315-323 (1985). El material de
partida es el plásmido (u otro vector) que comprende el ADN del
polipéptido de partida a mutar. Se identifica(n)
el(los) codón(es) en el ADN de partida a mutar. Debe
haber un único sitio de endonucleasa de restricción en cada lado
del(los) sitio(s) de mutación(es)
identificado(s). Si no existen tales sitios de restricción,
pueden generarse usando el procedimiento de mutagénesis mediado por
oligonucleótidos descrito anteriormente para introducirlos en
localizaciones adecuadas en el ADN del polipéptido de partida. Se
corta el ADN del plásmido en estos sitios para linealizarlos. Se
sintetiza un oligonucleótido de doble hebra que codifica la
secuencia del ADN entre los sitios de restricción pero que contiene
la(s) mutación(es) deseada(s) usando
procedimientos convencionales, en el que las dos hebras del
oligonucleótido se sintetizan por separado y a continuación se
hibridan juntas usando técnicas convencionales. Este oligonucleótido
de doble hebra se denomina la casete. Esta casete se diseña para
que tenga extremos 5' y 3' que sean compatibles con los extremos
del plásmido linealizado, de manera que pueda ligarse directamente
al plásmido. Este plásmido contiene ahora la secuencia de ADN
mutada.
Como alternativa, o además, puede determinarse
la secuencia de aminoácido deseada que codifica una variante de
polipéptido, y puede generarse sintéticamente una secuencia de ácido
nucleico que codifica tal secuencia de aminoácidos de la
variante.
La secuencia de aminoácidos del polipéptido
original puede modificarse para generar una región Fc variante con
afinidad o actividad de unión al receptor de Fc alteradas in
vitro y/o in vivo y/o actividad de citotoxicidad mediada
por células dependiente de anticuerpos (ADCC) alterada in
vitro y/o in vivo. La secuencia de aminoácidos del
polipéptido original puede también modificarse para generar una
región Fc variante con propiedades de unión al complemento y/o
semivida de circulación alteradas.
Pueden llevarse a cabo modificaciones
sustanciales en las propiedades biológicas de la región Fc
seleccionando sustituciones que difieren significativamente en su
efecto alterando (a) la estructura de la cadena principal del
polipéptido en el área de la sustitución, por ejemplo, como una
conformación de lámina o helicoidal, (b) la carga o hidrofobicidad
de la molécula en el sitio diana, o la carga de la cadena lateral,
(d) la interacción con carbohidratos, o (e) la flexibilidad del
movimiento del dominio. Los residuos que se presentan en la
naturaleza se dividen en clases basándose en propiedades comunes de
la cadena lateral:
(1) hidrófobos: norleucina, met, ala, val, leu,
ile;
(2) hidrófilos neutros: cys, ser, thr;
(3) ácidos: ASP, glu;
(4) básicos: asn, gln, his, lys, arg;
(5) residuos que influyen en la orientación de
la cadena: gly, pro; y
(6) aromáticos: trp, tyr, phe.
\vskip1.000000\baselineskip
Las sustituciones no conservadoras supondrán el
intercambio de un miembro de una de estas clases por un miembro de
otra clase. Las sustituciones conservadoras supondrán el intercambio
de un miembro de una de estas clases por otro miembro de la misma
clase.
Como se demuestra en los Ejemplos a
continuación, uno puede construir una variante de región Fc con
actividad alterada (función(es) efectora(s) y
farmacocinética). Uno puede, por ejemplo, modificar uno o más
residuos de aminoácidos de la región Fc para alterar (por ejemplo
aumentar o disminuir) la actividad de ADCC. En formas de
realización de preferencia, una modificación comprende uno o más de
los residuos de la región Fc identificados en el presente documento
(véase, por ejemplo, Ejemplo 2, y el Documento WO0042072). En
general, uno puede realizar una sustitución de aminoácidos en uno o
más de los residuos de la región Fc identificados en el presente
documento como que tienen efecto sobre la actividad de ADCC para
generar tal variante de la región Fc. En formas de realización de
preferencia, no se delecionarán o sustituirán más de uno hasta
aproximadamente diez residuos de la región Fc. Las regiones Fc que
en el presente documento comprenden una o más modificaciones de
aminoácidos (por ejemplo sustituciones) conservarán de preferencia
al menos aproximadamente 80%, y de preferencia al menos
aproximadamente 90%, y de más preferencia al menos aproximadamente
95%, de la secuencia de la región Fc original o de una región Fc
humana de secuencia nativa.
Uno puede también realizar variantes de la
región Fc por inserción de aminoácidos, cuyas variantes tienen
función efectora alterada. Por ejemplo, uno puede introducir al
menos un residuo de aminoácido (por ejemplo uno a dos residuos de
aminoácidos y generalmente no más de diez residuos) adyacente a una
o más posiciones de la región Fc identificadas en el presente
documento como que impactan en la unión de FcR. Por "adyacente"
se entiende entre uno a dos residuos de aminoácidos de un residuo
de la región Fc identificados en el presente documento. Tales
variantes de la región Fc pueden exhibir actividad de unión a FcR
y/o ADCC aumentada o disminuida con relación a la molécula
original. Para generar tales variantes de inserción, uno puede
evaluar una estructura cocristalina de un polipéptido que comprende
una región de unión de un FcR (por ejemplo el dominio extracelular
del FcR de interés) y la región Fc en la que se insertarán
el(los) residuos de aminoácido(s) (véase, por ejemplo,
Sondermann y col. Nature 406: 267 (2000); Deisenhofer, Biochemistry
20 (9): 2361-2370 (1981); y Burmeister y col.,
Nature 342: 379-383, (1994), para diseñar de manera
racional una variante de la región Fc con, por ejemplo, capacidad
de unión a FcR aumentada. En formas de realización de preferencia,
tal(es) inserción(es) se realizan en un bucle de la
región Fc, pero no en la estructura secundaria (es decir en una
hebra \beta) de la región Fc.
Introduciendo las modificaciones adecuadas en la
secuencia de aminoácidos en una región Fc original, uno puede
generar una región Fc variante que (a) media la citotoxicidad
mediada por células dependiente de anticuerpos (ADCC) en presencia
de células efectoras humanas más o menos eficazmente y/o (b) media
la citotoxicidad dependiente del complemento (CDC) en presencia de
complemento humano más o menos eficazmente y/o (c) se une a un
receptor de Fc gamma (Fc\gammaR) o a un receptor neonatal de Fc
(FcRn) con la afinidad deseada a diferentes valores de pH que el
polipéptido original. Tales variantes de la región Fc comprenderán
generalmente al menos una modificación de aminoácido en la región
Fc.
En formas de realización de preferencia, la
región Fc del polipéptido original es una región Fc humana, por
ejemplo una región Fc nativa humana de IgG1 (alotipos f y a,z),
IgG2, IgG3, IgG4 humanas, y todos los alotipos conocidos o
descubiertos de cualquier especie. Tales regiones tienen secuencias
tales como las que se muestran en la Figura 2 (SEC ID Nº:
1-8), Figura 3 (SEC ID Nº: 9-12), y
Figura 5 (SEC ID Nº: 32-37).
En ciertas formas de realización, para generar
una región Fc con mejor actividad de ADCC, el polipéptido original
tiene de preferencia actividad de ADCC preexistente (por ejemplo, el
polipéptido original comprende una región Fc de IgG1 humana o de
IgG3 humana). En algunas formas de realización, una variante con
mejor ADCC media la ADCC substancialmente de manera más eficaz que
un anticuerpo con una secuencia nativa de la región Fc de IgG1 o de
IgG3 (por ejemplo P247L).
En formas de realización de preferencia, se
introduce(n) modificación(es) de aminoácido(s)
en los dominios CH2 y/o CH3 de una región Fc. Las posiciones de
aminoácido útiles a modificar para generar una región Fc variante
de IgG con actividad de ADCC alterada incluyen cualquiera o más de
una de las posiciones de aminoácidos: 247, 251, 256, 268, 269, 270,
272, 276, 278, 280, 283, 285, 286, 289, 290, 292, 293, 294, 295,
296, 298, 300, 301, 303, 305, 307, 309, 330, 331, 332, 333, 334,
335, 337, 338, 339, 340, 360, 373, 376, 416, 419, 430, 434, 435,
437, 438, 439, ó 440 de la región Fc. En formas de realización de
preferencia, la región Fc original usada como el molde para generar
tales variantes comprende una región Fc de IgG humana.
En ciertas formas de realización, las
composiciones de la presente invención proporcionan composiciones
que comprenden una variante de un polipéptido original que tiene
una región Fc, en las que la variante media la citotoxicidad
mediada por células dependiente de anticuerpos (ADCC) en presencia
de células efectoras, y comprenden al menos una modificación de
aminoácido en la posición 247 en la región Fc. En ciertas formas de
realización, la modificación del aminoácido es P247L. En otras
formas de realización, la modificación del aminoácido es P247I o
P247H.
Las variantes de polipéptidos descritas
anteriormente pueden someterse a otras modificaciones, dependiendo
del uso deseado o previsto del polipéptido. Tales modificaciones
pueden incluir, por ejemplo, otra alteración de la secuencia de
aminoácidos (sustitución, inserción y/o deleción de residuos de
aminoácidos), modificaciones de carbohidratos, fusión a
polipéptido(s) heterólogo(s) y/o modificaciones
covalentes. Tales otras modificaciones pueden realizarse previo a,
simultáneamente con, o tras la(s) modificación(es) de
aminoácidos descritas anteriormente que dan como resultado una
alteración de la unión al receptor de Fc y/o de la actividad de
ADCC.
Como alternativa o además, puede ser útil
combinar modificaciones de aminoácidos con una o más de otras
modificaciones de aminoácidos que alteran la unión a C1q y/o la
función de citotoxicidad dependiente del complemento de la función
Fc. El polipéptido de partida de particular interés en el presente
documento es uno que se une a C1q y que exhibe citotoxicidad
dependiente del complemento (CDC). Las sustituciones de aminoácidos
descritas en el presente documento pueden servir para alterar la
capacidad del polipéptido de partida para unirse a C1q y/o para
modificar su función de citotoxicidad dependiente del complemento
(por ejemplo, para reducir y, de preferencia anular estas funciones
efectoras). Sin embargo, los polipéptidos que comprenden
sustituciones en una o más de las posiciones descritas con mejor
unión a C1q y/o mejor función de citotoxicidad dependiente del
complemento CDC están contemplados en el presente documento. Por
ejemplo, el polipéptido de partida puede ser incapaz de unirse a
C1q y/o mediar la CDC y puede modificarse según las enseñanzas del
presente documento de manera tal que adquiera estas otras funciones
efectoras. Además, los polipéptidos con actividad de unión a C1q
preexistente, que opcionalmente tienen también la capacidad de
mediar la CDC pueden modificarse de manera tal que se mejore una o
ambas de estas actividades. Las modificaciones de aminoácidos que
alteran C1q y/o modifican su función de citotoxicidad dependiente
del complemento se describen, por ejemplo, en el Documento
WO0042072.
Como se ha dado a conocer anteriormente, uno
puede diseñar una región Fc o una de sus porciones con función
efectora alterada, por ejemplo, modificando la actividad de CDC y/o
la actividad de ADCC. Por ejemplo, uno puede generar una región Fc
variante con mejor actividad de CDC y mejor actividad de ADCC (por
ejemplo, teniendo mejoradas tanto la actividad de ADCC como la
actividad de CDC). Como alternativa, donde uno desea que la función
efectora se reduzca o anule, uno puede generar una región Fc
variante con actividad de CDC reducida y/o actividad de ADCC
reducida. En otras formas de realización, uno puede aumentar una
sola de estas actividades, y opcionalmente también reducir la otra
actividad, por ejemplo, generar una variante de la región Fc con
mejor actividad de ADCC, pero actividad de CDC reducida y
viceversa. Además, uno puede generar una región Fc variante con
afinidad de unión a FcRn, proteína A, y/u otras proteínas de unión
de Fc modificadas.
Otro tipo de sustitución de aminoácidos sirve
para alterar el patrón de glicosilación del polipéptido. Esto puede
llevarse a cabo, por ejemplo, delecionando uno o más restos de
carbohidratos que se encuentran en el polipéptido, y/o adicionando
uno o más sitios de glicosilación que no están presentes en el
polipéptido. Como alternativa, esto puede llevarse a cabo de manera
indirecta alterando aminoácidos diferentes de los del sitio de
glicosilación o por medio de ingeniería sobre las células. La
glicosilación de los polipéptidos está típicamente ligada a N o
ligada a O. Ligada a N se refiere a la unión del resto carbohidrato
a la cadena lateral de un residuo asparagina. Las secuencias de
péptidos asparagina-X-serina y
asparagina-X-treonina, donde X es
cualquier aminoácido excepto prolina, son las secuencias de
reconocimiento para la unión enzimática del resto carbohidrato a la
cadena lateral de asparagina. Por consiguiente, la presencia de
cualquiera de estas secuencias de péptidos en un polipéptido crea
un potencial sitio de glicosilación. La glicosilación ligada a O se
refiere a la unión de uno de los azúcares
N-acetilgalactosamina, galactosa o xilosa a un
hidroxi aminoácido, más comúnmente serina o treonina, aunque
también pueden usarse 5-hidroxiprolina o
5-hidroxilisina.
La adición de sitios de glicosilación al
polipéptido se lleva a cabo de manera conveniente alterando la
secuencia de aminoácidos de manera tal que contenga una o más de
las secuencias de tripéptidos descritas anteriormente (para los
sitios de glicosilación ligados a N). La alteración puede realizarse
también por medio de la adición de, o sustitución por, uno o más
residuos serina o treonina a la secuencia del polipéptido original
(para los sitios de glicosilación ligados a O). Una variante de
glicosilación de ejemplo tiene una sustitución de aminoácidos del
residuo Asn 297 de la cadena pesada.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona composiciones que comprenden una variante de
un polipéptido original que tiene una región Fc, en las que la
variante comprende al menos una modificación de aminoácidos de
residuos de superficie (Véase, por ejemplo, Deisenhofer,
Biochemistry, 28; 20(9): 2361-2370, abril de
1981, y el Documento WO0042072). En algunas formas de realización,
la presente invención proporciona composiciones que comprenden una
variante de un polipéptido original que tiene una región Fc, en las
que la variante comprende al menos una modificación de aminoácidos
de residuos no superficiales. En otras formas de realización, la
presente invención comprende una variante de un polipéptido original
que tiene una región Fc, en las que la variante comprende al menos
una modificación de aminoácidos superficiales y al menos una
modificación de aminoácidos no superficiales.
En algunas formas de realización, las variantes
del presente documento comprenden dos o más modificaciones de
aminoácidos (por ejemplo sustituciones). Tales variantes de
combinación pueden producirse, por ejemplo, seleccionando dos o más
de las modificaciones de aminoácidos detalladas anteriormente. La
Tabla 1 a continuación proporciona combinaciones de ejemplo de dos
o más sustituciones de aminoácidos. Por ejemplo, la primera fila de
la Tabla 1 muestra combinaciones posibles de P247H con las otras
sustituciones de aminoácidos en las posiciones 251, 256, 268,
280.330, 332, 339, 378 y 440 (por ejemplo esta fila muestra
combinaciones de dos, tres, cuatro, cinco, seis, siete, ocho,
nueve, y diez modificaciones de aminoácidos).
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(Tabla pasa a página
siguiente)
Las variantes de la combinación mostradas en la
Tabla 1 y otras variantes de combinación (tales como las divulgadas
en el documento WO0042072) pueden probarse para una actividad dada
(por ejemplo actividad de unión a FcR, actividad de ADCC, y
actividad de CDC) en una diversidad de ensayos (Véase, sección IV, a
continuación). Con respecto a esto, pueden identificarse variantes
de combinación útiles.
En ciertas formas de realización de preferencia,
las variantes de combinación de la presente invención tienen una
modificación de aminoácidos que aumenta la actividad de ADCC, y una
modificación de aminoácidos que aumenta la afinidad de unión al
receptor neonatal de Fc (FcRn) (por ejemplo, a pH 6,0, pero no a pH
7,0 ó 7,4). En otras formas de realización, las variantes de la
combinación de la presente invención tienen una modificación de
aminoácidos de superficie, y una modificación de aminoácidos no
superficiales. Pueden generarse otras variantes de combinación
combinando dos o más de las modificaciones de aminoácidos descritas
en el presente documento, o al menos una de las modificaciones de
aminoácidos descritas en el presente documento con las descritas en
el Documento WO0042072.
La presente invención proporciona diversos
ensayos para seleccionar variantes de la región Fc. Los ensayos de
selección pueden usarse para hallar o confirmar variantes útiles.
Por ejemplo, pueden seleccionarse variantes de combinación (Véase
Tabla 1) para hallar variantes con unión a FcR alterada, y/o
actividad de ADCC alterada y/o actividad de CDC alterada (por
ejemplo actividad de ADCC o de CDC aumentada o disminuida) y/o
capacidad modificada para deplecionar células diana (células B, por
ej.) de la sangre entera. También, como se describe a continuación,
los ensayos de la presente invención pueden utilizarse para hallar o
confirmar variantes que tienen actividad terapéutica beneficiosa en
un sujeto (por ejemplo tal como un ser humano con síntomas de una
enfermedad sensible a anticuerpos o inmunoadhesinas). Puede
utilizarse una diversidad de tipos de ensayo para evaluar cualquier
cambio en una variante comparada con el polipéptido original (Véase,
ensayos de selección proporcionados en el Documento WO0042072). A
continuación se describen otros ensayos de ejemplo.
En formas de realización de preferencia, las
variantes de la presente invención son anticuerpos que conservan
esencialmente la capacidad de unirse a un antígeno (a través de una
región de unión al antígeno no modificada o de una región de unión
al antígeno modificada) comparado con el polipéptido no variante
(original) (por ejemplo la capacidad de unión no es de preferencia
peor que aproximadamente 20 veces o no es peor que aproximadamente
5 veces que la del polipéptido no variante). La capacidad de unión
de la variante del polipéptido al antígeno puede determinarse
usando técnicas tales como ELISA, análisis de separación de células
activadas por fluorescencia (FACS) o radioinmunoprecipitación
(RIA), por ejemplo.
Los ensayos de unión de receptores de Fc (FcR)
pueden utilizarse para evaluar las variantes de la presente
invención. Por ejemplo, puede medirse la unión de los receptores de
Fc tales como Fc\gammaRI, Fc\gammaRIIa, Fc\gammaRIIb,
Fc\gammaRIII, FcRn, etc., valorando la variante del polipéptido y
midiendo la variante del polipéptido unida usando un anticuerpo que
se une específicamente a la variante del polipéptido en un formato
de ELISA (véase Ejemplos a continuación). Por ejemplo, puede
seleccionarse una variante que comprende un anticuerpo en un ensayo
ELISA convencional para determinar la unión a un FcRn a pH 6,0 y a
pH 7,0 ó 7,4. Puede usarse una superficie sólida recubierta con
estreptavidina o Neutravidina para capturar FcRn marcados con
biotina de cualquier especie, tal como ratón o ser humano. Tras
bloquear, el receptor de captura puede incubarse con polipéptidos
variantes (anticuerpos) diluidos en tampones a pH 6,0 ó pH 7,0. En
la siguiente etapa, se añade una molécula específica para
anticuerpos humanos (por ejemplo (Fab')2 anti-Fab
humana de cabra conjugado a una enzima). A continuación puede
añadirse un substrato para determinar la cantidad de unión del
polipéptido variante al FcRn inmovilizado a pH 6,0 ó pH 7,0 ó 7,4.
Los resultados de este ensayo pueden compararse con la capacidad
del polipéptido original (no variante) para unirse al mismo FcR. En
otras formas de realización de preferencia, los componentes para
llevar a cabo un ELISA (por ejemplo con FcRn) para seleccionar
variantes están empaquetados en un kit (por ejemplo con
instrucciones de uso).
Puede usarse también un ensayo de citotoxicidad
celular dependiente de anticuerpos (ADCC) para seleccionar las
variantes de la presente invención. Los ensayos de ADCC pueden
realizarse in vitro o in vivo. Para evaluar la
actividad de ADCC de una variante de polipéptido puede realizarse un
ensayo de ADCC in vitro usando proporciones variables de
efector:diana. Un ensayo de ADCC de ejemplo podría usar una línea
celular diana que expresa cualquiera de los siguientes antígenos
diana: CD20, CD22, CD33, CD40, CD63, receptor de EGF, receptor de
her-2, antígeno de membrana específico de la
próstata, carbohidrato Y de Lewis, gangliósidos GD_{2} y GD_{3},
lamp-1, CO-029, L6, y ephA2. Las
células efectoras pueden obtenerse de un donador sano (por ejemplo
en el día del experimento) y de PBMC purificadas usando Histopaque
(Sigma). A continuación se preincuban las células diana con una
variante de IgG a concentraciones de, por ejemplo,
0,1-1.000 ng/ml durante aproximadamente 30 minutos
antes de mezclar con las células efectoras en proporciones de
efector: diana de, por ejemplo, 40:1, 20:1 y 10:1. A continuación
puede medirse la actividad de ADCC colorimétricamente usando un Kit
de Detección de Citotoxicidad (Roche Molecular Biochemicals) para
cuantificar la muerte celular y la lisis basándose en la medición de
la actividad de la lactato deshidrogenasa (LDH) liberada del
citosol de las células dañadas en el sobrenadante. La actividad de
ADCC puede medirse también, para ensayos de células diana cargadas
con Cromo 51, midiendo el Cromo 51 liberado resultante. La
citotoxicidad celular independiente de anticuerpos puede
determinarse midiendo la actividad de LDH de células diana y
efectoras en ausencia del anticuerpo. La liberación total puede
medirse después de la adición de Tritón X-100 al 1%
a la mezcla de células diana y efectoras. La incubación de las
células diana y efectoras puede llevarse a cabo durante un período
de tiempo optimizado (0,54-18 horas) a 37ºC en
CO_{2} al 5,0% y a continuación seguido por centrifugación de las
placas de ensayo. Los sobrenadantes pueden posteriormente
transferirse a 96 placas de pocillos e incubarse con reactivo de
detección de LDH durante 30 minutos a 25ºC. A continuación puede
medirse la absorbancia de la muestra a 490 nm usando un lector de
microplacas. Posteriormente puede calcularse el porcentaje de
citotoxicidad usando la siguiente ecuación: citotoxicidad % = valor
experimental-control bajo/control
alto-control bajo X 100%. El porcentaje de
citotoxicidad de anti CD20 y de las variantes puede a continuación
compararse directamente con la cantidad igual de RITUXAN para
proporcionar una medición de eficacia relativa. Un ensayo de ADCC de
ejemplo podría usar células SKW6.4 que sobreexpresan el antígeno
CD20 (por ejemplo adquiridas de la American Type Culture
Collection) como la fuente de células diana. En la técnica se
conocen muchas variaciones de este ensayo (Véase, por ejemplo,
Zuckerman y col., CRC Crit Rev Microbiol 1978;
7(1):1-26).
Las células efectoras útiles para tales ensayos
incluyen, pero no se limitan a, linfocitos citolíticos naturales
(NK), macrófagos, y otras células mononucleares de sangre periférica
(PBMC). Como alternativa, o además, la actividad de ADCC de las
variantes de polipéptidos de la presente invención puede evaluarse
in vivo, por ejemplo, en un modelo animal tal como el
divulgado en Clynes y col. PNAS (USA) 95: 652-656
(1998).
Las variantes de la presente invención pueden
también seleccionarse para activación del complemento. Para evaluar
la activación del complemento, puede llevarse a cabo un ensayo de
citotoxicidad dependiente del complemento (CDC) (Véase, por ejemplo
Gazzano-Santoro y col., J. Immunol. Methods, 202:163
(1996)). Por ejemplo, pueden diluirse diversas concentraciones de
la variante y de polipéptido en complemento humano con tampón. Las
células que expresan el antígeno a que se une la variante del
polipéptido pueden diluirse hasta una densidad de aproximadamente 1
x 10^{6} células/ml. Las mezclas de la variante de polipéptido,
complemento humano diluido y células que expresan el antígeno
pueden añadirse a placas de 96 pocillos de cultivo tisular de base
plana y pueden dejarse incubar durante 2 horas a 37ºC y CO_{2} al
5% para facilitar la lisis de las células mediada por el
complemento. A continuación pueden añadirse 50 \mul de azul
Alamar (Accumed Internacional) a cada pocillo e incubarse durante
la noche a 37ºC. La absorbancia puede medirse usando un fluorímetro
de 96 pocillos con excitación en 530 nm y emisión a 590 nm. Los
resultados pueden expresarse en unidades de fluorescencia relativa
(RFU). Las concentraciones de las muestras pueden calcularse a
partir de una curva patrón y la actividad por ciento, comparada con
el polipéptido no variante, puede informarse para el polipéptido
variante de interés.
En ciertas formas de realización, las variantes
de la presente invención no activan el complemento. Por ejemplo,
una variante de polipéptido exhibe aproximadamente
0-10% de actividad de CDC en este ensayo comparado
con un anticuerpo de control que tiene una región Fc de IgGI no
mutada. De preferencia la variante no parece tener ninguna
actividad de CDC (por ejemplo por encima del fondo) en el ensayo de
CDC anterior. En otras formas de realización, se encuentra que las
variantes de la presente invención tienen CDC aumentada comparada
con un polipéptido original (por ejemplo, exhibiendo
aproximadamente dos veces hasta aproximadamente cien veces (o
mayor) mejora en la actividad de CDC in vitro o in
vivo cuando se comparan los valores de CI50).
Las variantes de la presente invención pueden
también seleccionarse para depleción de células diana en un ensayo
de sangre entera. Por ejemplo, pueden seleccionarse diversas
concentraciones de la variante de polipéptido con especificidad de
diana CD20 para la depleción de células B en un ensayo de sangre
entera usando facs (Vugmeyster y col., 2003 Cytometry 52A,
101-109). Se incuba sangre recién extraída con
concentraciones variables de la variante de polipéptido a 37ºC y
CO_{2} al 5% durante 4 horas (el tiempo puede variarse). Tras la
incubación, los glóbulos rojos se lisan por indicaciones del
fabricante con un reactivo de cloruro de amonio
(Beckton-Dickinson Nº de catálogo 555899) y se
detectan por facs usando un anticuerpo marcado fluorescente
específico para las células B (anti-CD 19, por
ejemplo). Los resultados pueden expresarse como % de depleción de
las células B con relación a una muestra no tratada o a una muestra
incubada con un anticuerpo irrelevante (que no produce
depleción).
En formas de realización de preferencia, la
variante depleciona las células B con más eficacia que el
polipéptido original. Una variante puede deplecionar las células B,
por ejemplo, hasta aproximadamente dos veces o más, y de
preferencia alrededor de cinco veces o más. También, una variante
puede exhibir mayor potencia para deplecionar las células B. Por
ejemplo, una variante puede deplecionar el mismo porcentaje de
células B con relación al polipéptido original, pero utilizar cinco
veces menos, y de preferencia aproximadamente 10 veces menos
anticuerpo. La depleción de células diana mediada por variantes
puede ser aproximadamente 5 veces hasta aproximadamente 100 veces,
y de preferencia desde aproximadamente 5 veces hasta a
aproximadamente 1000 veces mejor comparada con el polipéptido
original.
Las variantes de la presente invención pueden
seleccionarse también in vivo. Puede utilizarse cualquier
tipo de ensayo in vivo. Un ejemplo particular de un tipo de
ensayo se proporciona a continuación. Este ensayo de ejemplo
permite la evaluación preclínica de las variantes de Fc in
vivo. Una variante a probar puede incorporarse en la región Fc
de un anticuerpo particular que se sabe que tiene alguna actividad.
Por ejemplo, puede incorporarse una variante en la región Fc de una
IgG anti-CD20 por medio de mutagénesis. Esto permite
comparar una IgG original y una IgG variante de Fc directamente con
RITUXAN (que se sabe que promueve la regresión tumoral). La
evaluación preclínica puede realizarse en 2 fases (una fase
farmacocinética y una farmacodinámica). El objetivo de los estudios
farmacocinéticos de Fase I es determinar si hay diferencias en la
tasa de aclaramiento entre una IgG variante de Fc y el anticuerpo
con actividad conocida in vivo (por ejemplo RITUXAN). Las
diferencias en la tasa de aclaramiento pueden provocar diferencias
en el nivel de estado estacionario de IgG en el suero. Como tales,
si se detectan diferencias en las concentraciones del estado
estacionario, éstas deben normalizarse para permitir la realización
de comparaciones precisas. El objetivo de los estudios
farmacodinámicos de Fase II es determinar el efecto de la mutación
de Fc sobre, en este caso, el crecimiento tumoral. Estudios previos
con RITUXAN usaron una única dosis que inhibió completamente el
crecimiento tumoral. Como esto no permite medir diferencias
cuantitativas, debe utilizarse un intervalo de dosis.
La comparación farmacocinética de Fase I de una
variante de Fc, la Fc original de tipo natural, y RITUXAN puede
realizarse de la siguiente manera. Primero, pueden inyectarse 40
\mug por animal por vía intravenosa y cuantificarse los niveles
plasmáticos de IgG a las 0, 25, 5, 1, 24, 48, 72, 96, 120, 168 y 336
horas. Los datos pueden ajustarse, por ejemplo, usando un programa
de farmacocinética (WinNonLin) que usa un modelo farmacocinético
bicompartimental de orden cero para obtener la tasa de aclaramiento.
Puede usarse la tasa de aclaramiento para definir el nivel
plasmático del estado estacionario con la siguiente ecuación: C =
Dosis/(tasa de aclaramiento X \tau), donde \tau es el intervalo
entre dosis y C es el nivel plasmático en el estado estacionario.
Los experimentos de farmacocinéticos pueden realizarse en ratones
que no tienen tumores con, por ejemplo, un mínimo de 5 ratones por
punto temporal.
Puede utilizarse un modelo animal para la
siguiente fase de la siguiente manera.
Pueden implantarse 10^{6} células Raji por vía
subcutánea en el flanco derecho de ratones
CB17-SCID. Puede comenzarse el bolo intravenoso de
la variante de Fc, la Fc del tipo natural, y RITUXAN inmediatamente
después de la implantación y continuarse hasta que el tamaño del
tumor sea superior a 2 cm de diámetro. El volumen del tumor puede
determinarse cada lunes, miércoles y viernes midiendo la longitud,
la anchura, y la profundidad del tumor usando un calibre (volumen
del tumor = W x L x D). Una representación gráfica del volumen del
tumor frente al tiempo dará la tasa de crecimiento del tumor para
el cálculo farmacodinámico. Debe usarse un mínimo de
aproximadamente 10 animales por grupo.
La comparación farmacodinámica de Fase II de la
variante de Fc, la Fc del tipo natural, y RITUXAN puede realizarse
de la siguiente manera. Basándose en datos publicados, RITUXAN en
concentración de 10 \mug/g semanalmente inhibió completamente el
crecimiento tumoral in vivo (Clynes y col., Nat. Med. abril
de 2000; 6 (4): 443-446, 2000). Por consiguiente,
puede probarse un intervalo de dosis semanal de 10 \mug/g, 5
\mug/g, 1 \mug/g, 0,5 \mug/g, y 0 \mug/g. El nivel
plasmático del estado estacionario en el que la tasa de crecimiento
tumoral se inhibe en un 50% puede determinarse gráficamente por la
relación entre el nivel plasmático del estado estacionario y la
eficacia. El nivel plasmático del estado estacionario puede
calcularse como se describe anteriormente. De ser necesario, \tau
puede ajustarse por consiguiente para cada variante de Fc y la Fc de
tipo natural dependiendo de sus propiedades farmacocinéticas para
alcanzar el nivel plasmático del estado estacionario comparable al
RITUXAN. Los valores farmacodinámicos estadísticamente mejores de la
variante de Fc en comparación con el polipéptido original (por
ejemplo Fc de tipo natural) y RITUXAN indicarán por lo general que
la variante de Fc confiere mejor actividad in vivo.
Pueden realizarse otras comparaciones
farmacodinámicas de las variantes de Fc, la Fc de tipo natural, y
RITUXAN en monos cynomolgus como se describió previamente (Reff y
col., Blood 83, 435-445, 1994). Puede usarse una
respuesta a la dosis para la depleción de las células B periféricas
y para las células B de nódulos linfáticos para comparar las
potencias relativas de las variantes de Fc con Fc de tipo natural y
Rituxan administrados por vía intravenosa y/o por vía subcutánea.
Los valores farmacodinámicos estadísticamente mejores de la variante
de Fc en comparación con el polipéptido original (por ejemplo Fc de
tipo natural) y RITUXAN indicarán por lo general que la variante de
Fc confiere mejor actividad in vivo.
En otras formas de realización, las variantes de
la presente invención se seleccionan de manera tal que se
identifiquen las variantes que son terapéuticamente útiles en al
menos dos especies. Tales variantes se denominan en el presente
documento "variantes mejoradas de especies dobles", y son
particularmente útiles para identificar las variantes que son
terapéuticas en seres humanos, y también demuestran (o tienen
probabilidad de demostrar) eficacia en un modelo animal. Al
respecto, la presente invención proporciona procedimientos para
identificar variantes que tienen una gran probabilidad de ser
aprobadas para pruebas clínicas en seres humanos ya que los datos
en modelos animales respaldarán probablemente cualquier aplicación
de prueba en seres humanos realizada para agencias reguladoras
gubernamentales (por ejemplo Food and Drug Administration de los
EEUU).
En ciertas formas de realización, las variantes
mejoradas de especies dobles se identifican realizando en primer
lugar un ensayo de ADCC usando células efectoras humanas para hallar
variantes mejoradas, y a continuación realizando un segundo ensayo
de ADCC usando células efectoras de ratón, rata, o de un primate no
humano para identificar una subserie de variantes mejoradas que son
variantes mejoradas de especies dobles. En algunas formas de
realización, la presente invención proporciona procedimientos para
identificar variantes mejoradas de especies dobles, que comprenden;
a) proporcionar; i) células diana, ii) una composición que comprende
una variante candidata de un polipéptido original que tiene al
menos una porción de una región Fc, en la que la variante candidata
comprende al menos una modificación de aminoácidos en la región Fc,
y en la que la variante candidata media la citotoxicidad de las
células diana en presencia de las células efectoras de una primera
especie (por ejemplo ser humano) de manera más eficaz que el
polipéptido original, y iii) células efectoras de la segunda
especie (por ejemplo ratón, rata, o primate no humano), y b) incubar
la composición con las células diana bajo condiciones tales que la
variante candidata se una a las células diana generando de esta
manera células diana unidas a la variante candidata, c) mezclar las
células efectoras de la segunda especie con las células diana
unidas a la variante candidata, y d) medir la citotoxicidad de las
células diana mediada por la variante candidata. En ciertas formas
de realización, el procedimiento comprende además la etapa e)
determinar si la variante candidata media la citotoxicidad de
células diana en presencia de las células efectoras de la segunda
especie de manera más eficaz que el polipéptido original. En algunas
formas de realización, el procedimiento comprende además la etapa
f) identificar una variante candidata como una variante mejorada de
especies dobles que media la citotoxicidad de células diana en
presencia de las células efectoras de la segunda especie de manera
más eficaz que el polipéptido original. En formas de realización de
preferencia, las variantes de especies dobles identificadas se
seleccionan a continuación in vivo en uno o más ensayos de
animales.
En ciertas formas de realización, las variantes
mejoradas de especies dobles se identifican realizando primero un
ensayo de sangre entera usando sangre humana para hallar variantes
mejoradas, y a continuación realizando un segundo ensayo de sangre
entera usando sangre de ratón, rata, o de primate no humano para
identificar una subserie de variantes mejoradas que son variantes
mejoradas de especies dobles. En algunas formas de realización, la
presente invención proporciona procedimientos para identificar
variantes mejoradas de especies dobles que comprenden; a)
proporcionar; i) células diana, ii) una composición que comprende
una variante candidata de un polipéptido original que tiene al
menos una porción de una región Fc, en la que la variante candidata
comprende al menos una modificación de aminoácidos en la región Fc,
y en la que la variante candidata media la depleción de las células
diana en presencia de la sangre de la primera especie (por ejemplo
ser humano) de manera más eficaz que el polipéptido original, y
iii) sangre de la segunda especie (por ejemplo ratón, rata, o
primate no humano), y b) incubar la composición con las células
diana bajo condiciones tales que la variante candidata se una a las
células diana generando de esta manera células diana unidas a la
variante candidata, c) mezclar la sangre de la segunda especie con
las células diana unidas a la variante candidata, y d) medir la
depleción de las células diana mediada por la variante candidata.
En ciertas formas de realización, el procedimiento comprende además
la etapa e) determinar si la variante candidata media la depleción
de células diana en presencia de la sangre de la segunda especie de
manera más eficaz que el polipéptido original. En algunas formas de
realización, el procedimiento comprende además la etapa f)
identificar una variante candidata como una variante mejorada de
especies dobles que media la depleción de células diana en presencia
de la sangre de la segunda especie de manera más eficaz que el
polipéptido original. En formas de realización de preferencia, las
variantes de especies dobles identificadas se seleccionan a
continuación in vivo en uno o más ensayos de animales.
En ciertas formas de realización, las variantes
mejoradas de especies dobles se identifican llevando a cabo
cualquiera de los ensayos anteriores usando componentes humanos (por
ejemplo células humanas, receptores de Fc humanos, etc.) para
identificar variantes mejoradas, y a continuación realizando el
mismo ensayo (o un ensayo diferente) con componentes de animales no
humanos (por ejemplo células de ratón, receptores de Fc de ratón,
etc.). Al respecto, puede identificarse una subserie de variantes
que funcionan bien según un criterio dado tanto en ensayos basados
en seres humanos como en ensayos basados en la segunda especie.
Un procedimiento de ejemplo para identificar
variantes mejoradas de especies dobles es el siguiente. Primero, se
muta una secuencia de ácido nucleico que codifica al menos una
porción de una región Fc de IgG tal que la secuencia de aminoácidos
expresada tenga al menos un cambio de aminoácidos, generando de esta
manera una variante. La variante de IgG expresada se caracteriza a
continuación en un ensayo de ADCC usando PBMC humanas o una
subserie (células NK o macrófagos, por ejemplo). Si se encuentra
actividad de ADCC mejorada, entonces se selecciona la variante en
un segundo ensayo de ADCC usando PBMC de ratón o de rata. Como
alternativa, o además, puede realizarse un ensayo con la variante
para la unión a líneas celulares o a receptores clonados de
roedores. Finalmente, si se encuentra que la variante está mejorada
en el segundo ensayo, convirtiéndola en una variante doble
mejorada, entonces la variante se selecciona in vivo en
ratones o ratas.
Las regiones Fc variantes de la presente
invención pueden ser parte de moléculas más grandes. Las moléculas
más grandes pueden ser, por ejemplo, anticuerpos monoclonales,
anticuerpos policlonales, anticuerpos quiméricos, anticuerpos
humanizados, anticuerpos biespecíficos, inmunoadhesinas, etc. Como
tales, resulta evidente que hay una gran variedad de aplicaciones
para las regiones Fc variantes de la presente invención.
En formas de realización de preferencia, la
molécula que contiene regiones Fc variantes (por ejemplo
polipéptido) es un anticuerpo. Las técnicas para producir
anticuerpos se describen a continuación.
En general, cuando la molécula que contiene
regiones Fc variantes es un anticuerpo, el anticuerpo, se dirige
contra un antígeno de interés. De preferencia, el antígeno es un
polipéptido y la administración del anticuerpo a un mamífero que
padece una enfermedad o trastorno puede dar como resultado un
beneficio terapéutico en ese mamífero. Sin embargo, pueden
utilizarse también anticuerpos dirigidos contra antígenos no
polipeptídicos (tales como antígenos de glicolípidos asociados a
tumores; véase la Patente de EE.UU. 5.091.178).
Los antígenos de ejemplo incluyen, pero no se
limitan a, moléculas tales como renina; una hormona de crecimiento,
incluidas la hormona de crecimiento humana y la hormona de
crecimiento bovina; un factor liberador de hormona de crecimiento;
hormona paratiroidea; hormona estimulante de la tiroides;
lipoproteínas; alfa-1-antitripsina;
cadena A de la insulina; cadena B de la insulina; proinsulina;
hormona estimulante del folículo; calcitonina; hormona
luteinizante; glucagón; factores de coagulación tales como el factor
VIIIC, el factor IX, el factor tisular (TF) y el factor de von
Willebrand; factores anticoagulantes tales como Proteína C; factor
natriurético atrial; tensioactivo pulmonar; un activador del
plasminógeno, tal como uroquinasa o activador del plasminógeno de
orina humana o de tipo tisular (t-PA); bombesina;
trombina; factor de crecimiento hematopoyético; factor de necrosis
tumoral alfa y beta; encefalinasa; RANTES (regulado por activación,
normalmente expresado y secretado en células T); proteína
inflamatoria de macrófagos humanos
(MIP-1-alfa); una albúmina sérica
tal como la albúmina sérica humana; sustancia inhibidora de Müller;
cadena A de la relaxina; cadena B de la relaxina; prorrelaxina;
péptido asociado a gonadotropina de ratón; una proteína microbiana,
tal como beta-lactamasa; ADNasa; IgE; un antígeno
asociado a linfocito T citotóxico (CTLA), tal como
CTLA-4; inhibina; activina; factor de crecimiento
endotelial vascular (VEGF); receptores para hormonas o factores de
crecimiento; proteína A o D; factores reumatoides; un factor
neurotrófico tal como factor neurotrófico derivado de hueso (BDNF),
neurotrofina-3, -4, -5 ó -6 (NT-3,
NT-4, NT-5 ó NT-6),
o un factor de crecimiento nervioso; factor de crecimiento derivado
de plaquetas (PDGF); factor de crecimiento de fibroblastos tal como
\alphaFGF y \betaFGF; factor de crecimiento epidérmico (EGF);
factor de crecimiento transformante (TGF) tal como
TGF-alfa y TGF-beta, incluidos
TGF-1, TGF-2, TGF-3,
TGF-4 ó TGF-5; factor de crecimiento
análogo a la insulina-l y -II
(IGF-I e IGF-II);
des(1-3)-IGF-I
(IGF-I de cerebro), proteínas de unión de factor de
crecimiento análogo a la insulina; proteínas CD tales como CD3,
CD4, CD8, CD19 y CD20; eritropoyetina; factores osteoinductores;
inmunotoxinas; una proteína morfogénica ósea (BMP); un interferón
tal como interferón-alfa, -beta, y -gamma; factores
estimuladores de colonias (CSFs), por ejemplo,
M-CSF, GM-CSF y
G-CSF; interleucinas (ILs), por ejemplo,
IL-1 hasta IL-10; superóxido
dismutasa; receptores de células T; proteínas de membranas
superficiales; factor acelerador de la degradación; antígeno viral
tal como, por ejemplo, una parte de la cubierta del SIDA; proteínas
de transporte; receptores de localización; adresinas; proteínas
reguladoras; integrinas tales como CD11a, CD11b, CD11c, CD18, una
ICAM, VLA-4 y VCAM; un antígeno asociado a tumor
tal como el receptor HER2, HER3 o HER4; un miembro de una vía de
apoptosis; y los fragmentos de cualquiera de los polipéptidos
anteriormente presentados.
Los antígenos de preferencia incluyen, pero no
se limitan a, las proteínas CD tales como CD3, CD4, CD8, CD19, CD20
y CD34; los miembros de la familia de receptores ErbB tales como el
receptor de EGF, el receptor HER2, HER3 o HER4; moléculas de
adhesión celular tales como LFA-1, Mac1, p150.95,
VLA-4, ICAM-1, VCAM, integrina
a4/p7, y la integrina Xv/p3 incluidas sus subunidades (por ejemplo
anticuerpos anti-CD11a, anti-CD18 o
anti-CD11b); factores de crecimiento tales como
VEGF; factor tisular (TF); interferón alfa (a-IFN);
una interleucina tal como IL-8; IgE; antígenos de
los grupos sanguíneos; receptor flk2/flt3; receptor de la obesidad
(OB); receptor mpl; CTLA-4; proteína C, etc.
Pueden usarse antígenos solubles o sus
fragmentos, conjugados opcionalmente a otras moléculas, como
inmunógenos para generar los anticuerpos. Para las moléculas
transmembranarias, tales como receptores, pueden usarse fragmentos
de éstas (por ejemplo el dominio extracelular de un receptor) como
el inmunógeno. Como alternativa, pueden usarse células que expresan
la molécula transmembranaria como el inmunógeno. Tales células
pueden obtenerse de una fuente natural (por ejemplo líneas
celulares de cáncer) o pueden ser células que se han transformado
mediante técnicas recombinantes para expresar la molécula
transmembranaria. Resultarán evidentes para los expertos en la
técnica otros antígenos y sus formas útiles para preparar
anticuerpos.
La presente invención proporciona anticuerpos
policlonales con regiones Fc variantes. Por ejemplo, puede
transplantarse un repertorio de inmunoglobulinas humanas que
contienen regiones constantes G1 modificadas en ratones inactivados
para las inmunoglobulinas, dando como resultado la expresión en el
ratón de un repertorio de IgG que contiene las regiones Fc
modificadas (véase por ejemplo Mendez, MJ y col., Nature Genetics
15:146 (1997). Los anticuerpos policlonales se generan de
preferencia en animales por medio de múltiples inyecciones
subcutáneas (sc) o intraperitoneales (ip) del antígeno relevante y
un adyuvante. Puede ser útil conjugar el antígeno relevante a una
proteína que es inmunogénica en la especie a inmunizar (por ejemplo
hemocianina de lapa californiana, albúmina sérica, tiroglobulina
bovina o inhibidor de tripsina de soja) mediante el uso de un agente
bifuncional o derivatizador (por ejemplo, éster de maleimidobenzoil
sulfosuccinimida para la conjugación por medio de residuos de
cisteína, N-hidroxisuccinimida para la conjugación
por medio de residuos de lisina, glutaraldehído, anhídrido
succínico, SOCl_{2} o R1N=C=NR, en el que R y R1 son grupos
alquilo diferentes).
Los ejemplos de un protocolo de inmunización
general para un conejo y un ratón son los siguientes. Los animales
se inmunizan contra el antígeno, conjugados inmunogénicos o
derivados combinando, por ejemplo, 100 \mug ó 5 \mug de la
proteína o conjugado (para un conejo o ratón, respectivamente) con 3
volúmenes de adyuvante completo de Freund, y se inyecta la
disolución por vía intradérmica en múltiples sitios. Un mes más
tarde se estimulan los animales con una dosis de refuerzo de 1/5 a
1/10 la cantidad original del péptido o conjugado en adyuvante
completo de Freund mediante inyección subcutánea en múltiples
sitios. Siete a catorce días más tarde se extrae sangre a los
animales y se analiza el valor de anticuerpos en el suero. Se
administran dosis de refuerzo a los animales hasta que el valor
alcanza una meseta. De preferencia, el animal se refuerza con el
conjugado del mismo antígeno, pero conjugado a una proteína
diferente y/o por medio de un agente de entrecruzamiento diferente.
Los conjugados también pueden producirse en cultivo de células
recombinantes en forma de fusiones de proteínas. Además, se usan de
manera adecuada agentes agregantes tales como alumbre para potenciar
la respuesta inmune.
La presente invención proporciona anticuerpos
monoclonales con regiones Fc variantes. Los anticuerpos monoclonales
pueden producirse en una serie de formas, incluido el procedimiento
del hibridoma (por ejemplo como está descrito por Kohler y col.,
Nature, 256:495, 1975), o por medio de procedimientos de ADN
recombinante (por ejemplo, Patente de EE.UU. Nº 4.816.567).
En el procedimiento del hibridoma, se inmuniza
un ratón u otro animal huésped apropiado, tal como un hámster o un
mono macaco, para producir linfocitos que producen o son capaces de
producir anticuerpos que se unirán de manera específica a la
proteína usada para la inmunización. Como alternativa, los
linfocitos pueden inmunizarse in vitro. Los linfocitos se
fusionan a continuación con células de mieloma mediante el uso de un
agente de fusión adecuado, tal como polietilenglicol, para formar
una célula de hibridoma. Las células de hibridoma preparadas de
esta manera se siembran y se cultivan en un medio de cultivo
adecuado que contiene de preferencia una o más sustancias que
inhiben el crecimiento o la supervivencia de las células de mieloma
originales sin fusionar. Por ejemplo, si las células de mieloma
originales carecen de la enzima hipoxantina guanina fosforribosil
transferasa (HGPRT o HPRT), el medio de cultivo para los hibridomas
incluirá típicamente hipoxantina, aminopterina y timidina (medio
HAT), cuyas sustancias evitan el crecimiento de las células
deficientes de HGPRT.
Las células de mieloma de preferencia son las
que se fusionan de manera eficaz, mantienen una producción estable
de elevado nivel de anticuerpo por las células productoras de
anticuerpo seleccionadas, y son sensibles a un medio tal como el
medio HAT. Entre éstas, las líneas celulares de mieloma de
preferencia son las líneas de mieloma murinas, tales como las
derivadas de los tumores de ratón MOPC-21 y
MPC-11 disponibles del Salk Institute Cell
Distribution Center, San Diego, California, EEUU, y las células
SP-2 o X63-Ag8-653
disponibles de la American Type Culture Collection, Rockville,
Maryland, EEUU. Se han descrito también líneas celulares de mieloma
humano y heteromieloma de ratón-humano para la
producción de anticuerpos monoclonales humanos (Kozbor, J.
Immunol., 133:3001 (1984)).
El medio de cultivo en el que crecen las células
de hibridoma se analiza para la producción de anticuerpos
monoclonales dirigidos contra el antígeno. De preferencia, la
especificidad de unión de los anticuerpos monoclonales producidos
por las células de hibridoma se determina por medio de
inmunoprecipitación o por medio de un ensayo de unión in
vitro, tal como un radioinmunoensayo (RIA) o un ensayo de
inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA). Después de identificar
las células de hibridoma que producen anticuerpos de la
especificidad, afinidad y/o actividad deseadas, los clones pueden
subclonarse mediante procedimientos de dilución limitante y
cultivarse por medio de procedimientos convencionales. Los medios
de cultivo adecuados para este objeto incluyen, por ejemplo, medio
D-MEM o RPMI-1640. Además, las
células de hibridoma pueden cultivarse in vivo como tumores
ascíticos en un animal. Los anticuerpos monoclonales secretados por
los subclones se separan de manera adecuada del medio de cultivo,
líquido ascítico o suero mediante procedimientos convencionales de
purificación de inmunoglobulinas tales como, por ejemplo, proteína
A-Sepharose, cromatografía con hidroxiapatita,
electroforesis en gel, diálisis o cromatografía de afinidad.
El ADN que codifica los anticuerpos monoclonales
se aísla y se secuencia fácilmente mediante el uso de procedimientos
convencionales (por ejemplo, usando sondas de oligonucleótidos que
son capaces de unirse de manera específica a los genes que
codifican las cadenas pesadas y ligeras de los anticuerpos
monoclonales). Las células de hibridoma sirven como una fuente de
preferencia de tal ADN. Una vez aislado, el ADN puede colocarse en
vectores de expresión, que se transfectan a continuación a células
hospedadoras tales como células de E. coli, células COS de
simio, células de ovario de hámster chino (CHO), o células de
mieloma que no producen de otra forma proteína inmunoglobulina,
para obtener la síntesis de anticuerpos monoclonales en las células
huésped recombinantes. La producción recombinante de anticuerpos se
describe con más detalle a continuación.
En algunas formas de realización, pueden
aislarse anticuerpos o fragmentos de anticuerpos de bibliotecas de
anticuerpos en fagos generadas mediante el uso de las técnicas
descritas en, por ejemplo, McCafferty y col., Nature,
348:552-554 (1990), Clackson y col., Nature,
352:624-628 (1991) y Marks y col., J. Mol. Biol.,
222:581-597 (1991) describen el aislamiento de
anticuerpos murinos y humanos, respectivamente, usando bibliotecas
de fagos. Las publicaciones posteriores describen la producción de
anticuerpos humanos de elevada afinidad (intervalo nM) mediante
ordenamiento aleatorio de cadenas (Marks y col., Bio/Technology,
10:779-783 (1992)), así como la infección
combinatoria y la recombinación in vivo como estrategia para
construir bibliotecas de fagos muy grandes (por ejemplo, Waterhouse
y col., Nuc. Acids. Res., 21:2265-2266 (1993)). Por
consiguiente, estas técnicas, y técnicas similares, son
alternativas viables a las técnicas de hibridomas de anticuerpos
monoclonales tradicionales para el aislamiento de anticuerpos
monoclonales.
También, puede modificarse el ADN, por ejemplo,
sustituyendo la secuencia codificadora de los dominios constantes
de las cadenas pesadas y ligeras humanas en lugar de las secuencias
homólogas murinas (por ejemplo, Patente de EEUU Nº 4.816.567 y
Morrison, y col., Proc. Natl Acad. Sci. USA, 81:6851 (1984)), o
uniendo de manera covalente a la secuencia codificadora de la
inmunoglobulina toda o parte de la secuencia codificadora de un
polipéptido que no es una inmunoglobulina.
Típicamente, tales polipéptidos que no son
inmunoglobulinas se sustituyen por los dominios constantes de un
anticuerpo, o se sustituyen por los dominios variables de un sitio
de combinación con un antígeno de un anticuerpo para crear un
anticuerpo bivalente quimérico que comprende un sitio de combinación
con un antígeno que tiene especificidad por un antígeno y otro
sitio de combinación con un antígeno que tiene especificidad por un
antígeno diferente.
La presente invención proporciona anticuerpos
humanizados y humanos con regiones Fc variantes. En formas de
realización de preferencia, un anticuerpo humanizado comprende
secuencias de aminoácidos de anticuerpos humanos junto con residuos
de aminoácidos que no son de anticuerpos humanos. En algunas formas
de realización, las secuencias humanas en un anticuerpo humanizado
comprenden las regiones marco estructural (FR) y las secuencias o
residuos que no son de anticuerpo humano comprenden una o más
regiones determinantes de complementariedad (CDR).
Cabe destacar que las FR y CDR pueden definirse
basándose en la numeración de residuos de aminoácidos en las
regiones variables de la cadena pesada y ligera. El término región
determinante de complementariedad, o CDR tiene la intención de
significar los sitios de combinación no contiguos del antígeno que
se encuentran dentro de la región variable de ambas cadenas de
polipéptidos, de la cadena pesada y ligera. Estas regiones están
definidas por Kabat y col. (J. Biol. Chem. 252:
6609-6616 (1977) y Kabat y col. Sequences of
Proteins of Immunological Interest (1991); "Kabat"), Chothia y
col. (J. Mol. Biol. 196: 901-917 (1987);
"Chothia") y MacCallum y col. (J. Mol. Biol. 262:
732-745 (1996); "MacCallum"), donde las
definiciones incluyen solapamientos o subseries de residuos de
aminoácidos cuando se comparan una con la otra. Sin embargo, la
aplicación de cualquiera de estas definiciones solas (por ejemplo,
la definición de Kabat) o en combinación (solo a manera de ejemplo,
la definición combinada de Kabat y Chothia) para referirse a una CDR
de un anticuerpo (incluido un anticuerpo humanizado) tiene la
intención de estar dentro del ámbito del término según se define y
usa en el presente documento. Los residuos de aminoácidos que
abarcan las CDR según se definen por medio de cada una de las
referencias citadas anteriormente se exponen a continuación en la
Tabla 6 como una comparación.
También, el término "marco estructural"
cuando se usa con referencia a una región variable del anticuerpo
tiene la intención de significar todos los residuos de aminoácidos
fuera de las regiones CDR dentro de la región variable de un
anticuerpo. Por consiguiente, un marco estructural de región
variable tiene una longitud de entre aproximadamente 100 y 120
aminoácidos pero tiene la intención de referirse sólo a los
aminoácidos fuera de las CDR. El término "región del marco
estructural" tiene la intención de significar cada dominio del
marco estructural que está separado por las CDR. Por consiguiente,
para el ejemplo específico de una región variable de la cadena
pesada y para las CDR según están definidas por Kabat, la región
marco estructural 1 (FR1) corresponde al dominio de la región
variable que abarca los aminoácidos 1-30; la región
2 (FR2) corresponde al dominio de la región variable que abarca los
aminoácidos 36-49; la región 3 (FR3) corresponde al
dominio de la región variable que abarca los aminoácidos
66-94; y la región 4 (FR4) corresponde al dominio de
la región variable desde el aminoácido 103 hasta el final de la
región variable. Las regiones marco estructural para la cadena
ligera están separadas de manera similar por cada una de las
regiones variables CDR de la cadena ligera. De manera similar,
usando la definición de CDR por Chothia o MacCallum o cualquier
combinación de definiciones de CDR, los límites del marco
estructural están separados por los respectivos extremos terminales
de CDR como se describió anteriormente. No obstante las múltiples
definiciones de CDR, en algunas formas de realización, resulta de
preferencia usar la definición de Kabat para definir las CDR.
Los residuos en un anticuerpo humanizado que no
son de un anticuerpo humano pueden ser residuos o secuencias
importados de derivados de otras especies (incluidas pero no
limitadas a ratón), o estas secuencias pueden ser secuencias
aleatorias de aminoácidos (por ejemplo, generadas a partir de
secuencias aleatorias de ácidos nucleicos), que se insertan en la
secuencia del anticuerpo humanizado. Como se indicó anteriormente,
las secuencias de aminoácidos humanos en un anticuerpo humanizado
son de preferencia las regiones marco, mientras que los residuos
que no son de un anticuerpo humano (ya sea derivados de otra especie
o de secuencias aleatorias de aminoácidos) corresponden de
preferencia a las CDR. Sin embargo, en algunas formas de
realización, una o más regiones marco estructural pueden contener
uno o más residuos de aminoácidos no humanos. En casos de
alteraciones o modificaciones (por ejemplo, por introducción de un
residuo no humano) a un marco estructural de otra manera humano, es
posible que la región marco estructural alterada o modificada esté
adyacente a un CDR modificado de otra especie o a una secuencia
aleatoria de CDR, mientras que en otras formas de realización, una
región marco estructural alterada no está adyacente a una secuencia
de CDR alterada de otra especie o a una secuencia aleatoria de CDR.
En algunas formas de realización, las secuencias marco estructural
de un anticuerpo son totalmente humanas (es decir se realizan
cambios del marco estructural al marco estructural humano). En
formas de realización de preferencia, las secuencias marco
estructural de un anticuerpo humanizado son totalmente de línea
germinal humana (es decir no se realizan cambios del marco
estructural al marco estructural de línea germinal humana).
Los residuos de aminoácidos no humanos de otras
especies, o de una secuencia aleatoria, se denominan frecuentemente
residuos "importados", que típicamente se toman de un dominio
variable "importado". La humanización puede realizarse
esencialmente siguiendo el método de Winter y colaboradores (por
ejemplo, Jones y col., Nature, 321:522-525 (1986);
Riechmann y col., Nature, 332:323-327 (1988);
Verhoeyen y col., Science, 239:1534-1536 (1988)),
sustituyendo secuencias de CDRs o CDR de roedor (u otro mamífero)
por las secuencias correspondientes de un anticuerpo humano.
También, pueden generarse anticuerpos en los que se ha sustituido
sustancialmente menos de un dominio variable humano intacto por la
secuencia correspondiente de una especie no humana (por ejemplo
Patente de EEUU Nº 4.816.567). En la práctica, los anticuerpos
humanizados son típicamente anticuerpos humanos en los que ciertos
residuos de CDR y posiblemente ciertos residuos de FR se sustituyen
por residuos de sitios análogos en anticuerpos de roedor, o como se
indicó anteriormente, en los que las secuencias de CDR se han
sustituido por secuencias aleatorias. Sólo a manera de ejemplo no
limitante, los procedimientos para conferir afinidad de unión del
CDR donador a un marco estructural de región variable del anticuerpo
aceptor se describen en el Documento WO 01/27160 A1 y en las
Solicitudes de EEUU 09/434.870 y 09/982.464.
La elección de los dominios variables humanos,
tanto ligeros como pesados, a usar en la producción de los
anticuerpos humanizados es importante para reducir la antigenicidad.
Según el procedimiento denominado del "mejor ajuste", se
selecciona la secuencia del dominio variable de un anticuerpo de
roedor a humanizar frente a la biblioteca completa de las
secuencias de los dominios variables humanos conocidos. La secuencia
humana que es la más cercana a la del roedor se acepta entonces
como el marco estructural (FR) humano para el anticuerpo humanizado
(por ejemplo, Sims y col., J. Immunol., 151:2296 (1993) y Chothia y
col., J. Mol. Biol., 196:901 (1987)). Otro procedimiento usa un
marco estructural particular derivado de la secuencia de consenso de
todos los anticuerpos humanos de un subgrupo particular de cadenas
ligeras o pesadas. Puede usarse el mismo marco estructural para
varios anticuerpos humanizados diferentes (por ejemplo, Carter y
col., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 89:4285 (1992); Presta y col., J.
Immunol., 151:2623 (1993)).
En otras formas de realización, no hay necesidad
de "preseleccionar" un marco estructural particular del
anticuerpo humano (es decir no hay necesidad de seleccionar un
marco estructural humano con la mayor homología o identidad de
secuencia a un anticuerpo candidato a humanizar). En estas formas de
realización, puede usarse un marco estructural humano común o
universal para aceptar una o más CDR no humanas. En la forma de
realización de preferencia, se usa un marco estructural único,
universal, totalmente humano como el marco estructural para que
todos los anticuerpos a humanizar, independientemente de su
homología con la(s) secuencia(s) del marco
estructural de los anticuerpos candidatos. Al respecto, pueden
generarse anticuerpos humanizados sin realizar ningún cambio en la
región del marco estructural. Este marco estructural universal,
totalmente humano puede aceptar a continuación una o más secuencias
de CDR. En una forma de realización, la o las secuencias de CDR son
las secuencias de CDR de un anticuerpo de otra especie (por ejemplo
ratón o rata) que se han modificado en comparación con la CDR
correspondiente en el anticuerpo intacto de la otra especie (es
decir hay introducción simultánea de la CDR y modificación de la
CDR introducida en el marco estructural humano universal). La
modificación corresponde a uno o más cambios de aminoácidos (en la
CDR modificada) en comparación con la CDR correspondiente en el
anticuerpo intacto de la otra especie. En una forma de realización,
todos los residuos de aminoácidos en la CDR están incluidos en una
biblioteca, mientras que en otras formas de realización, no todos
los residuos de aminoácido de la CDR están incluidos en una
biblioteca. En otra forma realización, la o las secuencias de CDR
son secuencias aleatorias, que sustituyen a las secuencias de
la
CDR.
CDR.
En formas de realización de preferencia, los
anticuerpos se humanizan con mantenimiento de una afinidad elevada
por el antígeno y otras propiedades biológicas favorables. En
algunas formas de realización, la afinidad del anticuerpo
humanizado por el antígeno es más alta que la afinidad del
correspondiente anticuerpo intacto, no humanizado o fragmento o
porción del mismo (por ejemplo, el anticuerpo de roedor candidato).
Al respecto, en algunas formas de realización, los anticuerpos
humanizados se preparan mediante un procedimiento de análisis de las
secuencias originales y diversos productos humanizados conceptuales
usando modelos tridimensionales de las secuencias originales y
humanizadas. Los modelos de inmunoglobulinas tridimensionales están
disponibles comúnmente y son conocidos para los expertos en la
técnica. Hay disponibles programas informáticos que ilustran y
visualizan las estructuras conformacionales tridimensionales
probables de las secuencias de inmunoglobulinas candidatas
seleccionadas. La inspección de estas visualizaciones permite el
análisis de la función probable de los residuos en el funcionamiento
de la secuencia de inmunoglobulina candidata, es decir, el análisis
de los residuos que influyen en la capacidad de la inmunoglobulina
candidata para unirse a su antígeno. De esta manera, los residuos de
FR pueden seleccionarse y combinarse de las secuencias receptora e
importada, de forma que se consigue la característica deseada del
anticuerpo, tal como la afinidad aumentada por el/los
antígeno(s) diana. En general, los residuos de CDR están
implicados de forma directa y muy sustancialmente en influir en la
unión al antígeno.
Pueden utilizarse una diversidad de
procedimientos específicos, bien conocidos por los expertos en la
técnica, para introducir CDR de anticuerpos (o secuencias
aleatorias que sustituyen a las CDR de anticuerpos) en marcos
estructurales de anticuerpos (véase, por ejemplo, las Solicitudes de
EEUU 09/434879 y 09/982464). En algunas formas de realización,
pueden usarse oligos superpuestos para sintetizar un gen de
anticuerpo o una porción del mismo (por ejemplo, un gen que
codifica un anticuerpo humanizado). En otras formas de realización,
puede llevarse a cabo la mutagénesis de un molde de anticuerpo
usando los métodos de Kunkel (infra), por ejemplo para introducir
una CDR modificada o para sustituir una CDR por una secuencia
aleatoria. En algunas formas de realización, las regiones variables
de cadenas ligeras y pesadas se humanizan por separado, y a
continuación se expresan conjuntamente como una región variable
humanizada. En otras formas de realización, las regiones variables
humanizadas constituyen la región variable de un anticuerpo intacto.
En algunas formas de realización, la región Fc del anticuerpo
intacto que comprende una región variable humanizada se ha
modificado (por ejemplo, se ha realizado al menos una modificación
de aminoácidos en la región Fc). Por ejemplo, un anticuerpo que se
ha humanizado con CDR aleatorizada y sin cambios del marco
estructural puede comprender al menos una modificación de
aminoácidos en la
región Fc.
región Fc.
En otras formas de realización, se utilizan
animales transgénicos (por ejemplo ratones) que son capaces, tras
la inmunización, de producir un repertorio completo de anticuerpos
humanos en ausencia de producción de inmunoglobulinas endógenas.
Por ejemplo, se ha descrito que la deleción homocigota del gen de la
región de unión de la cadena pesada (JH) de anticuerpos en ratones
mutantes quiméricos y de línea germinal da como resultado la
inhibición completa de la producción de anticuerpos endógenos. La
transferencia de la colección de genes de inmunoglobulina de la
línea germinal humana en tales ratones mutantes de línea germinal
dará como resultado la producción de anticuerpos humanos tras la
exposición al antígeno. Véase, por ejemplo, Jakobovits y col., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA, 90:2551 (1993) y Jakobovits y col., Nature,
362:255-258 (1993). Los anticuerpos humanos pueden
obtenerse también de bibliotecas de expresión en fagos (por ejemplo,
Hoogenboom y col., J. Mol. Biol., 227:381 (1991) y Vaughan y col.
Nature Biotech 14:309 (1996)).
La presente invención proporciona procedimientos
para generar anticuerpos humanizados (y fragmentos de anticuerpo)
que comprenden al menos una modificación de aminoácidos en la región
Fc (comparado con un polipéptido original que tiene una región Fc).
A continuación se analizan otros procedimientos para generar tales
anticuerpos humanizados. La presente invención también proporciona
composiciones que comprenden los anticuerpos y los fragmentos de
anticuerpos generados por estos procedimientos. En gran medida, los
procedimientos de humanización que se analizan a continuación, y
otros procedimientos de humanización (por ejemplo analizados
anteriormente), pueden combinarse con las variantes de Fc de la
presente invención. Al respecto, pueden construirse anticuerpos
humanizados con regiones Fc únicas, alteradas, según la presente
invención.
En algunas formas de realización, se proporciona
un procedimiento para construir una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas pesadas, que
comprende: a) proporcionar una representación de la primera y
segunda secuencia de aminoácidos de referencia, comprendiendo la
primera secuencia de referencia la secuencia de una región variable
donadora de cadena pesada, comprendiendo la región variable donadora
i) regiones del marco estructural y ii) tres regiones determinantes
de complementariedad según se definen por medio de las definiciones
de Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia
de referencia la secuencia de una región variable aceptora de
cadena pesada que comprende regiones del marco estructural; b)
sintetizar a) los primeros oligonucleótidos que codifican porciones
de la región del marco estructural de la región variable aceptora
de cadena pesada, en el que las porciones de las regiones del marco
estructural cuando se comparan con la segunda secuencia de
referencia no están modificadas; y b) una población de segundos
oligonucleótidos, que codifica cada una i) al menos una porción de
una primera región determinante de complementariedad que se ha
modificado, seleccionada la primera región determinante de
complementariedad del grupo constituido por HCDR1, HCDR2 y HCDR3,
en los que la primera región determinante de complementariedad
modificada comprende un aminoácido diferente en una o más
posiciones cuando se compara con las regiones determinantes de
complementariedad donadoras correspondientes de la primera
secuencia de referencia, y ii) una o más porciones de las regiones
del marco estructural sin modificar que son capaces de hibridar con
los primeros oligonucleótidos; c) mezclar los primeros
oligonucleótidos con la población de segundos oligonucleótidos para
crear superposición de oligonucleótidos; y d) tratar la
superposición de oligonucleótidos bajo condiciones tales que se
construya una población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas pesadas alteradas, en los que las regiones del
marco estructural codificadas por los ácidos nucleicos que codifican
regiones variables alteradas de cadenas pesadas no están
modificadas con respecto a la segunda secuencia de referencia.
En algunas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas ligeras para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, la síntesis comprende sintetizar
químicamente. En algunas formas de realización, el aceptor es
humano. En algunas formas de realización, el tratamiento de la
etapa D) comprende la extensión por medio de una polimerasa.
En algunas formas de realización, se proporciona
un procedimiento para construir una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas ligeras, que
comprende: a) proporcionar una representación de la primera y
segunda secuencia de aminoácidos de referencia, comprendiendo la
primera secuencia de referencia la secuencia de una región variable
donadora de cadena ligera, comprendiendo la región variable donadora
i) regiones del marco estructural y ii) tres regiones determinantes
de complementariedad según se definen por medio de las definiciones
de Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia
de referencia la secuencia de una región variable aceptora de
cadena ligera que comprende regiones del marco estructural; b)
sintetizar a) los primeros oligonucleótidos que codifican porciones
de la región del marco estructural de la región variable aceptora
de cadena ligera, en los que las porciones de las regiones del marco
estructural cuando se comparan con la segunda secuencia de
referencia no están modificadas; y b) una población de segundos
oligonucleótidos, que codifica cada una i) al menos una porción de
una primera región determinante de complementariedad que se ha
modificado, la primera región determinante de complementariedad
seleccionada del grupo constituido por LCDR1, LCDR2 y LCDR3, en los
que la primera región determinante de complementariedad modificada
comprende un aminoácido diferente en una o más posiciones cuando se
compara con las regiones determinantes de complementariedad
donadoras correspondientes de la primera secuencia de referencia, y
ii) una o más porciones de las regiones del marco estructural sin
modificar que son capaces de hibridar con los primeros
oligonucleótidos; c) mezclar los primeros oligonucleótidos con la
población de segundos oligonucleótidos para crear superposición de
oligonucleótidos; y d) tratar la superposición de oligonucleótidos
bajo condiciones tales que se construya una población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables de cadenas ligeras
alteradas, en los que las regiones del marco estructural
codificadas por los ácidos nucleicos que codifican regiones
variables alteradas de cadenas ligeras no están modificadas con
respecto a la segunda secuencia de referencia.
En algunas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas ligeras alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas pesadas para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, la síntesis comprende sintetizar
químicamente. En algunas formas de realización, el aceptor es
humano. En algunas formas de realización, el tratamiento de la
etapa D) comprende la extensión por medio de una polimerasa.
En algunas formas de realización, está
contemplado un procedimiento para construir una población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables alteradas de cadenas
pesadas, que comprende: A) proporcionar una representación de la
primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de referencia la secuencia de
una región variable donadora de cadena pesada, comprendiendo la
región variable donadora i) regiones del marco estructural y ii)
tres regiones determinantes de complementariedad según se definen
por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia combinadas;
comprendiendo la segunda secuencia de referencia la secuencia de
una región variable aceptora de cadena pesada que comprende regiones
del marco estructural; B) sintetizar a) una población de primeros
oligonucleótidos que codifican cada uno al menos una porción de una
primera región determinante de complementariedad seleccionada del
grupo constituido por HCDR1, HCDR2 y HCDR3, en los que la primera
región determinante de complementariedad modificada comprende un
aminoácido diferente en una o más posiciones cuando se compara con
las regiones determinantes de complementariedad donadoras
correspondientes de la primera secuencia de referencia; y b)
segundos oligonucleótidos que codifican i) porciones de la región
del marco estructural de la región variable de cadenas pesadas
aceptora, en los que las porciones de las regiones del marco
estructural cuando se comparan con la secuencia de referencia no
están modificadas e, ii) una o más porciones de una región
determinante de complementariedad que es capaz de hibridar con la
población de primeros oligonucleótidos; C) mezclar la población de
primeros oligonucleótidos con los segundos oligonucleótidos para
crear superposición de oligonucleótidos; y D) tratar la
superposición de oligonucleótidos bajo condiciones tales que se
construya una población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas pesadas alteradas, en los que las regiones del
marco estructural codificadas por los ácidos nucleicos que
codifican regiones variables alteradas de cadenas pesadas no están
modificadas con respecto a la segunda secuencia de referencia.
En algunas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas ligeras para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, la síntesis comprende sintetizar
químicamente. En algunas formas de realización, el aceptor es
humano. En algunas formas de realización, el tratamiento de la
etapa D) comprende la extensión por medio de una polimerasa.
En otras formas de realización, se proporciona
un procedimiento para construir una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas ligeras, que
comprende: A) proporcionar una representación de la primera y
segunda secuencia de aminoácidos de referencia, comprendiendo la
primera secuencia de referencia la secuencia de una región variable
donadora de cadena ligera, comprendiendo la región variable donadora
i) regiones del marco estructural y ii) tres regiones determinantes
de complementariedad según se definen por medio de las definiciones
de Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia
de referencia la secuencia de una región variable aceptora de
cadena ligera que comprende regiones del marco estructural; B)
sintetizar a) una población de primeros oligonucleótidos que
codifican cada uno al menos una porción de una primera región
determinante de complementariedad seleccionada del grupo constituido
por LCDR1, LCDR2 y LCDR3, en los que la primera región determinante
de complementariedad modificada comprende un aminoácido diferente
en una o más posiciones cuando se compara con las regiones
determinantes de complementariedad donadoras correspondientes de la
primera secuencia de referencia; y b) segundos oligonucleótidos que
codifican i) porciones de la región del marco estructural de la
región variable de cadenas ligeras aceptora, en los que las
porciones de las regiones del marco estructural cuando se comparan
con la secuencia de referencia no están modificadas e, ii) una o
más porciones de una región determinante de complementariedad que es
capaz de hibridar con la población de primeros oligonucleótidos; C)
mezclar la población de primeros oligonucleótidos con los segundos
oligonucleótidos para crear superposición de oligonucleótidos; y D)
tratar la superposición de oligonucleótidos bajo condiciones tales
que se construya una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas ligeras alteradas, en los que las
regiones del marco estructural codificadas por los ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas ligeras no
están modificadas con respecto a la segunda secuencia de
referencia.
En algunas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas ligeras alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas pesadas para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, la síntesis comprende sintetizar
químicamente. En algunas formas de realización, el aceptor es
humano. En algunas formas de realización, el tratamiento de la
etapa D) comprende la extensión por medio de una polimerasa.
En otras formas de realización, está contemplado
un procedimiento para construir una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas pesadas, que
comprende: a) proporcionar una representación de la primera y
segunda secuencia de aminoácidos de referencia, comprendiendo la
primera secuencia de referencia la secuencia de una región variable
donadora de cadena pesada, comprendiendo la región variable donadora
i) regiones del marco estructural y ii) tres regiones determinantes
de complementariedad, comprendiendo la segunda secuencia de
referencia una región variable de cadena pesada; b) sintetizar una
población de secuencias genéticas de anticuerpos de regiones
variables de cadenas pesadas alteradas, en los que las regiones del
marco estructural de las regiones variables de cadenas pesadas
alteradas son idénticas a las regiones del marco estructural de la
segunda secuencia de referencia y al menos una primera CDR de las
regiones variables del anticuerpo alterado se ha modificado, en los
que la primera CDR modificada comprende un aminoácido diferente en
una o más posiciones cuando se compara con la CDR donadora
correspondiente de la primera secuencia de referencia.
En algunas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas ligeras para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, el aceptor es humano. En algunas formas de
realización, la síntesis implica el uso de oligonucleótidos
superpuestos. En algunas formas de realización, las CDR están
definidas por medio de la definición de Kabat.
En algunas formas de realización, está
contemplado un procedimiento para construir una población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables alteradas de cadenas
ligeras, que comprende: a) proporcionar una representación de la
primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de referencia la secuencia de
una región variable donadora de cadena ligera, comprendiendo la
región variable donadora i) regiones del marco estructural y ii)
tres regiones determinantes de complementariedad; comprendiendo la
segunda secuencia de referencia la secuencia de una región variable
de cadena ligera aceptora que comprende regiones del marco
estructural; b) sintetizar una población de secuencias genéticas de
anticuerpos de regiones variables de cadenas ligeras alteradas, en
los que las regiones del marco estructural de las regiones variables
de cadenas ligeras alteradas son idénticas a las regiones del marco
estructural de la segunda secuencia de referencia y al menos una
primera CDR de la región variable de cadena ligera del anticuerpo
alterado se ha modificado, en el que la primera CDR modificada
comprende un aminoácido diferente en una o más posiciones cuando se
compara con la CDR donadora correspondiente de la primera secuencia
de referencia.
En algunas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En algunas formas de realización, el
procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas ligeras alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas pesadas para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, el aceptor es humano. En algunas formas de
realización, la síntesis implica el uso de oligonucleótidos
superpuestos.
En aún otras formas de realización, está
contemplado un procedimiento para construir una población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables alteradas de cadenas
pesadas, que comprende: a) proporcionar una representación de una
secuencia de aminoácidos de referencia, comprendiendo la secuencia
de referencia la secuencia de una región variable de cadena pesada
aceptora, que comprende regiones del marco estructural; b)
sintetizar una población de secuencias genéticas de anticuerpos de
regiones variables de cadenas pesadas alteradas, en los que las
regiones del marco estructural de las regiones variables de cadenas
pesadas alteradas son idénticas a las regiones del marco
estructural de la secuencia de referencia y al menos una primera CDR
de la región variable del anticuerpo alterado comprende una
secuencia aleatoria de aminoácidos.
En algunas formas de realización, la
representación de la secuencia de referencia está en forma
electrónica. En algunas formas de realización, el procedimiento
comprende además la etapa de (E) coexpresar la población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables de cadenas pesadas
alteradas con un ácido nucleico que codifica regiones variables de
cadenas ligeras para producir una población diversa de regiones
variables heteroméricas alteradas. En algunas formas de
realización, el aceptor es humano. En algunas formas de realización,
la síntesis implica el uso de oligonucleótidos superpuestos. En
algunas formas de realización, las CDR están definidas por medio de
la definición de Kabat.
En otras formas de realización, está contemplado
un procedimiento para construir una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas ligeras, que
comprende: a) proporcionar una representación de una secuencia de
aminoácidos de referencia, comprendiendo la secuencia de referencia
la secuencia de una región variable de cadena ligera aceptora, que
comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar una
población de secuencias genéticas de anticuerpos de regiones
variables de cadenas ligeras alteradas, en los que las regiones del
marco estructural de las regiones variables de cadenas ligeras
alteradas son idénticas a las regiones del marco estructural de la
secuencia de referencia y al menos una primera CDR de la región
variable de cadenas ligeras del anticuerpo alterado comprende una
secuencia aleatoria de aminoácidos.
En algunas formas de realización, la
representación de la secuencia de referencia está en forma
electrónica. En algunas formas de realización, el procedimiento
comprende además la etapa de (E) coexpresar la población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables de cadenas ligeras
alteradas con un ácido nucleico que codifica regiones variables de
cadenas pesadas para producir una población diversa de regiones
variables heteroméricas alteradas. En algunas formas de
realización, el aceptor es humano. En algunas formas de realización,
la síntesis implica el uso de oligonucleótidos superpuestos. En
algunas formas de realización, las CDR están definidas por medio de
la definición de Kabat.
En aún otras formas de realización, está
contemplado un procedimiento para construir una población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables alteradas de cadenas
pesadas, que comprende: a) proporcionar una representación de una
secuencia de aminoácidos de referencia, comprendiendo la secuencia
de referencia la secuencia de una región variable de cadena pesada
aceptora humana, que comprende regiones del marco estructural; b)
sintetizar una población de secuencias genéticas de anticuerpos de
regiones variables de cadenas pesadas alteradas, en los que las
regiones del marco estructural de las regiones variables de cadenas
pesadas alteradas son idénticas a las regiones del marco
estructural de la secuencia de referencia humana y al menos una
primera CDR de las regiones variables del anticuerpo alterado
comprende una secuencia aleatoria de aminoácidos. En algunas formas
de realización, la representación de la secuencia de referencia
humana está en forma electrónica. En algunas formas de realización,
el procedimiento comprende además la etapa de (E) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que codifica
regiones variables de cadenas ligeras para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En algunas
formas de realización, la síntesis implica el uso de
oligonucleótidos superpuestos. En algunas formas de realización,
las CDR están definidas por medio de la definición de Kabat.
En otras formas de realización, está contemplado
un procedimiento para construir una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables alteradas de cadenas ligeras, que
comprende: a) proporcionar una representación de una secuencia de
aminoácidos de referencia, comprendiendo la secuencia de referencia
la secuencia de una región variable de cadena ligera aceptora
humana, que comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar
una población de secuencias genéticas de anticuerpos de regiones
variables de cadenas ligeras alteradas, en los que las regiones del
marco estructural de las regiones variables de cadenas ligeras
alteradas son idénticas a las regiones del marco estructural de la
secuencia de referencia humana y al menos una primera CDR de las
regiones variables de las cadenas ligeras del anticuerpo alterado
comprende una secuencia aleatoria de aminoácidos.
En algunas formas de realización, la
representación de la secuencia de referencia está en forma
electrónica. En algunas formas de realización, el procedimiento
comprende además la etapa de (E) coexpresar la población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables de cadenas ligeras
alteradas con un ácido nucleico que codifica regiones variables de
cadenas pesadas para producir una población diversa de regiones
variables heteroméricas alteradas. En algunas formas de
realización, la síntesis implica el uso de oligonucleótidos
superpuestos. En algunas formas de realización, las CDR están
definidas por medio de la definición de Kabat.
En algunas formas de realización, una o más
regiones del marco estructural se modifican simultáneamente con la
introducción de una o más CDR modificadas. En otras formas de
realización los marcos estructurales modificados están adyacentes a
las CDR modificadas.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas pesadas, que comprenden: a) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena pesada,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena pesada que
comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar a) una
primera población de oligonucleótidos, que comprende
oligonucleótidos que codifican una región del marco estructural de
la región variable de cadenas pesadas modificadas, o una de sus
porciones, en los que la región del marco estructural de la región
variable de cadenas pesadas, o una de sus porciones, contiene una
pluralidad de aminoácidos cambiados en una o más posiciones cuando
se compara con la secuencia de referencia de la región del marco
estructural aceptor, en los que las posiciones del marco
estructural que se cambian se seleccionan entre las posiciones del
marco estructural aceptor de la segunda secuencia de referencia que
difiere en la posición correspondiente comparada con las posiciones
del marco estructural donador de la primera secuencia de
referencia; y b) una segunda población de oligonucleótidos, que
codifica cada una i) al menos una región determinante de
complementariedad modificada, o una de sus porciones, en los que la
región determinante de complementariedad modificada, o una de sus
porciones, comprende un aminoácido diferente en una o más
posiciones cuando se compara con la secuencia de aminoácidos de
referencia de la región determinante complementaria donadora y ii)
una o más porciones de las regiones del marco estructural adyacente
que son capaces de hibridar con la primera población de
oligonucleótidos; y c) mezclar la primera y segunda poblaciones de
oligonucleótidos para crear oligonucleótidos superpuestos; y d)
tratar los oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que
se construya una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas pesadas alteradas. En ciertas formas
de realización, la representación de la primera y segunda secuencia
de referencia está en forma electrónica. En otras formas de
realización, los procedimientos comprenden además la etapa de (e)
coexpresar la población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que
codifica regiones variables de cadenas ligeras para producir una
población diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En
otras formas de realización, la síntesis comprende sintetizar
químicamente. En algunas formas de realización, el aceptor es
humano. En formas de realización de preferencia, la o las
poblaciones diversas de regiones variables heteroméricas alteradas
son parte de un anticuerpo que comprende una región Fc, en el que la
región Fc comprende al menos una modificación de aminoácidos
comparada con el polipéptido original que tiene una región Fc.
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas ligeras, que comprenden: a) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena ligera,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena ligera que
comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar a) una
primera población de oligonucleótidos, que comprende
oligonucleótidos que codifican una región del marco estructural de
la región variable de cadenas ligeras modificadas, o una de sus
porciones, en los que la región del marco estructural de la región
variable de cadenas ligeras, o una de sus porciones, contiene una
pluralidad de aminoácidos cambiados en una o más posiciones cuando
se compara con la secuencia de referencia de la región del marco
estructural aceptor, en los que las posiciones del marco
estructural que se cambian se seleccionan entre las posiciones del
marco estructural aceptor de la segunda secuencia de referencia que
difiere en la posición correspondiente comparada con las posiciones
del marco estructural donador de la primera secuencia de
referencia; y b) una segunda población de oligonucleótidos, que
codifica cada una i) al menos una región determinante de
complementariedad modificada, o una de sus porciones, en los que la
región determinante de complementariedad modificada, o una de sus
porciones, comprende un aminoácido diferente en una o más
posiciones cuando se compara con la secuencia de aminoácidos de
referencia de la región determinante complementaria donadora y ii)
una o más porciones de las regiones del marco estructural adyacente
que son capaces de hibridar con la primera población de
oligonucleótidos; y c) mezclar la primera y segunda poblaciones de
oligonucleótidos para crear oligonucleótidos superpuestos; y d)
tratar los oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que
se construya una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas ligeras alteradas. En otras formas de
realización, la representación de la primera y segunda secuencia de
referencia está en forma electrónica. En otras formas de
realización, los procedimientos comprenden además la etapa de (e)
coexpresar la población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas ligeras alteradas con un ácido nucleico que
codifica regiones variables de cadenas pesadas para producir una
población diversa de regiones variables heteroméricas alteradas.
En algunas formas de realización, los
procedimientos comprenden: a) proporcionar una representación de la
primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena pesada,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de
Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de
referencia la secuencia de una región variable aceptora de cadena
pesada que comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar
a) una primera población de oligonucleótidos, que comprende
oligonucleótidos que codifican una región del marco estructural de
la región variable de cadenas pesadas modificadas, o una de sus
porciones, en los que la región del marco estructural de la región
variable de cadenas pesadas, o una de sus porciones, contiene una
pluralidad de aminoácidos cambiados en una o más posiciones cuando
se compara con la secuencia de referencia de la región del marco
estructural aceptor, en los que las posiciones del marco
estructural que se cambian se seleccionan entre las posiciones del
marco estructural aceptor de la segunda secuencia de referencia que
difiere en la posición correspondiente comparada con las posiciones
del marco estructural donador de la primera secuencia de
referencia; y b) una segunda población de oligonucleótidos, que
codifica cada una i) al menos una región determinante de
complementariedad modificada, o una de sus porciones, en los que la
región determinante de complementariedad modificada, o una de sus
porciones, comprende un aminoácido diferente en una o más
posiciones cuando se compara con la secuencia de aminoácidos de
referencia de la región determinante complementaria donadora y ii)
una o más porciones de las regiones del marco estructural adyacente
que son capaces de hibridar con la primera población de
oligonucleótidos; y c) mezclar la primera y segunda poblaciones de
oligonucleótidos para crear oligonucleótidos superpuestos; y d)
extender los oligonucleótidos superpuestos con una ADN polimerasa
bajo condiciones tales que se construya una población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables de cadenas pesadas
alteradas.
En aún otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas ligeras, que comprenden: a) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena ligera,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena ligera que
comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar a) una
primera población de oligonucleótidos, que comprende
oligonucleótidos que codifican una región del marco estructural de
la región variable de cadenas ligeras modificadas, o una de sus
porciones, en los que la región del marco estructural de la región
variable de cadenas ligeras, o una de sus porciones, contiene una
pluralidad de aminoácidos cambiados en una o más posiciones cuando
se compara con la secuencia de referencia de la región del marco
estructural aceptor, en los que las posiciones del marco
estructural que se cambian se seleccionan entre las posiciones del
marco estructural aceptor de la segunda secuencia de referencia que
difiere en la posición correspondiente comparada con las posiciones
del marco estructural donador de la primera secuencia de
referencia; y b) una segunda población de oligonucleótidos, que
codifica cada una i) al menos una región determinante de
complementariedad modificada, o una de sus porciones, en los que
región determinante de complementariedad modificada, o una de sus
porción, comprende un aminoácido diferente en una o más posiciones
cuando se compara con la secuencia de aminoácidos de referencia de
la región determinante complementaria donadora y ii) una o más
porciones de las regiones del marco estructural adyacente que son
capaces de hibridar con la primera población de oligonucleótidos; y
c) mezclar la primera y segunda poblaciones de oligonucleótidos
para crear oligonucleótidos superpuestos; y d) extender los
oligonucleótidos superpuestos con una ADN polimerasa bajo
condiciones tales que se construya una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables de cadenas ligeras alteradas.
En algunas formas de realización, se introducen
una o más modificaciones en el marco estructural, simultáneamente
con la introducción de una o más CDR modificadas. Las CDR
modificadas pueden comprender una o más alteraciones de aminoácidos
en comparación con la CDR correspondiente de una secuencia de
referencia. En ciertas formas de realización, los procedimientos
para construir una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables alteradas de cadenas pesadas, comprenden: a)
proporcionar una representación de la primera y segunda secuencia
de aminoácidos de referencia, comprendiendo la primera secuencia de
aminoácidos de referencia la secuencia de una región variable
donadora de cadena pesada, comprendiendo la región variable donadora
i) regiones del marco estructural y ii) tres regiones determinantes
de complementariedad según se definen por medio de las definiciones
de Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia
de referencia la secuencia de una región variable aceptora de
cadena pesada que comprende regiones del marco estructural; b)
sintetizar i) una primera población de oligonucleótidos, que
codifican cada uno al menos una región determinante de
complementariedad modificada, en los que la región determinante de
complementariedad modificada comprende un aminoácido diferente en
una o más posiciones cuando se compara con la correspondiente
secuencia de referencia de aminoácidos de la región determinante de
complementariedad donadora; y ii) una segunda población de
oligonucleótidos, que comprende oligonucleótidos que codifican
porciones modificadas de un marco estructural de la región variable
de cadenas pesadas, conteniendo la porción modificada una pluralidad
de aminoácidos cambiados en una o más posiciones cuando se compara
con la secuencia de referencia de la región del marco estructural
aceptor, en los que las posiciones del marco estructural que se
cambian se seleccionan entre las posiciones del marco estructural
aceptor de la segunda secuencia de referencia que difiere en la
posición correspondiente comparada con las posiciones del marco
estructural donador de la primera secuencia de referencia; c)
mezclar la primera y segunda poblaciones de oligonucleótidos bajo
condiciones tales que al menos una porción de los oligonucleótidos
hibride para crear oligonucleótidos superpuestos; y d) tratar los
oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que se
construya una población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas pesadas alteradas. En ciertas formas de
realización, la representación de la primera y segunda secuencia de
referencia está en forma electrónica. En otras formas de
realización, el procedimiento comprende además la etapa de (e)
coexpresar la población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que
codifica regiones variables de cadenas ligeras para producir una
población diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En
otras formas de realización, el aceptor es humano.
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas ligeras, que comprenden: a) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena ligera,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena ligera que
comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar i) una
primera población de oligonucleótidos, que codifican cada uno al
menos una región determinante de complementariedad modificada, en
los que la región determinante de complementariedad modificada
comprende un aminoácido diferente en una o más posiciones cuando se
compara con la correspondiente secuencia de referencia de
aminoácidos de la región determinante de complementariedad donadora;
y ii) una segunda población de oligonucleótidos, que comprende
oligonucleótidos que codifican porciones modificadas de un marco
estructural de la región variable de cadenas ligeras, conteniendo la
porción modificada una pluralidad de aminoácidos cambiados en una o
más posiciones cuando se compara con la secuencia de referencia de
la región del marco estructural aceptor, en los que las posiciones
del marco estructural que se cambian se seleccionan entre las
posiciones del marco estructural aceptor de la segunda secuencia de
referencia que difiere en la posición correspondiente comparada con
las posiciones del marco estructural donador de la primera secuencia
de referencia; c) mezclar la primera y segunda poblaciones de
oligonucleótidos bajo condiciones tales que al menos una porción de
los oligonucleótidos hibride para crear oligonucleótidos
superpuestos; y d) tratar los oligonucleótidos superpuestos bajo
condiciones tales que se construya una población de ácidos nucleicos
que codifican regiones variables de cadenas ligeras alteradas.
En ciertas formas de realización, pueden
generarse anticuerpos o fragmentos de anticuerpos que comprenden
una variante de Fc y una región variante de cadenas pesadas
alteradas. Por ejemplo, en algunas formas de realización, la
presente invención proporciona procedimientos para construir una
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables
alteradas de cadenas pesadas, que comprenden: a) proporcionar una
representación de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de
referencia, comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de
referencia la secuencia de una región variable donadora de cadena
pesada, comprendiendo la región variable donadora i) regiones del
marco estructural y ii) tres regiones determinantes de
complementariedad según se definen por medio de las definiciones de
Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia
de referencia la secuencia de una región variable aceptora de cadena
pesada que comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar
A) primeros oligonucleótidos, que codifican porciones de las
regiones del marco estructural de la región variable de cadena
pesada aceptora, en los que las porciones de las regiones del marco
estructural cuando se comparan con la segunda secuencia de
referencia no están modificadas; y B) una población de segundos
oligonucleótidos, que codifican cada uno i) al menos una porción de
una primera región determinante de complementariedad que se ha
modificado, seleccionada la primera región determinante de
complementariedad del grupo constituido por HCDR1, HCDR2 y HCDR3,
en los que la primera región determinante de complementariedad
modificada comprende un aminoácido diferente en una o más posiciones
cuando se compara con las regiones determinantes de
complementariedad donadoras correspondientes de la primera secuencia
de referencia y ii) una o más porciones de las regiones del marco
estructural sin modificar que son capaces de hibridar con los
primeros oligonucleótidos; c) mezclar los primeros oligonucleótidos
con la población de segundos oligonucleótidos para crear
oligonucleótidos superpuestos; y d) tratar los oligonucleótidos
superpuestos bajo condiciones tales que se construya una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de cadenas
pesadas alteradas, en los que las regiones del marco estructural
codificadas por los ácidos nucleicos que codifican regiones
variables alteradas de cadenas pesadas no están modificadas con
respecto a la segunda secuencia de referencia. En algunas formas de
realización, los procedimientos comprenden además la etapa de (E)
coexpresar la población de ácidos nucleicos que codifican regiones
variables de cadenas pesadas alteradas con un ácido nucleico que
codifica regiones variables de cadenas ligeras para producir una
población diversa de regiones variables heteroméricas alteradas.
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas ligeras, que comprenden: a) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena ligera,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena ligera que
comprende regiones del marco estructural; b) sintetizar a) primeros
oligonucleótidos, que codifican porciones de las regiones del marco
estructural de la región variable de cadena ligera aceptora, en los
que las porciones de las regiones del marco estructural cuando se
comparan con la segunda secuencia de referencia no están
modificadas; y b) una población de segundos oligonucleótidos, que
codifican cada uno i) al menos una porción de una primera región
determinante de complementariedad que se ha modificado, seleccionada
la primera región determinante de complementariedad del grupo
constituido por LCDR1, LCDR2 y LCDR3, en los que la primera región
determinante de complementariedad modificada comprende un
aminoácido diferente en una o más posiciones cuando se compara con
las regiones determinantes de complementariedad donadoras
correspondientes de la primera secuencia de referencia y ii) una o
más porciones de las regiones del marco estructural sin modificar
que son capaces de hibridar con los primeros oligonucleótidos; c)
mezclar los primeros oligonucleótidos con la población de segundos
oligonucleótidos para crear oligonucleótidos superpuestos; y d)
tratar los oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que
se construya una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas ligeras alteradas, en los que las
regiones del marco estructural codificadas por los ácidos nucleicos
que codifican regiones variables de cadenas ligeras alteradas no
están modificadas con respecto a la segunda secuencia de
referencia.
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas pesadas, que comprenden: A) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena pesada,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena pesada que
comprende regiones del marco estructural; B) sintetizar a) una
población de primeros oligonucleótidos, que codifican cada uno al
menos una porción de una primera región determinante de
complementariedad seleccionada del grupo constituido por HCDR1,
HCDR2 y HCDR3, en los que la primera región determinante de
complementariedad modificada comprende un aminoácido diferente en
una o más posiciones cuando se compara con las regiones
determinantes de complementariedad donadoras correspondientes de la
primera secuencia de referencia; y b) segundos oligonucleótidos que
codifican i) porciones de las regiones del marco estructural de la
región variable aceptora de cadenas pesadas, en los que las
porciones de las regiones del marco estructural cuando se comparan
con la secuencia de referencia no están modificadas y ii) una o más
porciones de una región determinante de complementariedad que es
capaz de hibridar con la población de primeros oligonucleótidos; C)
mezclar la población de primeros oligonucleótidos con los segundos
oligonucleótidos para crear oligonucleótidos superpuestos; y D)
tratar los oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que
se construya una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas pesadas alteradas, en los que las
regiones del marco estructural codificadas por los ácidos nucleicos
que codifican regiones variables de cadenas pesadas alteradas no
están modificadas con respecto a la segunda secuencia de
referencia. En ciertas formas de realización, los procedimientos
comprenden además la etapa de (E) coexpresar la población de ácidos
nucleicos que codifican regiones variables de cadenas pesadas
alteradas con un ácido nucleico que codifica regiones variables de
cadenas ligeras para producir una población diversa de regiones
variables heteroméricas alteradas.
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para construir una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas ligeras, que comprenden: A) proporcionar una representación
de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de referencia,
comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de referencia la
secuencia de una región variable donadora de cadena ligera,
comprendiendo la región variable donadora i) regiones del marco
estructural y ii) tres regiones determinantes de complementariedad
según se definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de referencia la
secuencia de una región variable aceptora de cadena ligera que
comprende regiones del marco estructural; B) sintetizar a) una
población de primeros oligonucleótidos, que codifican cada uno al
menos una porción de una primera región determinante de
complementariedad seleccionada del grupo constituido por LCDR1,
LCDR2 y LCDR3, en los que la primera región determinante de
complementariedad modificada comprende un aminoácido diferente en
una o más posiciones cuando se compara con las regiones
determinantes de complementariedad donadoras correspondientes de la
primera secuencia de referencia y b) segundos oligonucleótidos que
codifican i) porciones de las regiones del marco estructural de la
región variable aceptora de cadenas ligeras, en los que las
porciones de las regiones del marco estructural cuando se comparan
con la secuencia de referencia no están modificadas y ii) una o más
porciones de una región determinante de complementariedad que es
capaz de hibridar con la población de primeros oligonucleótidos; C)
mezclar la población de primeros oligonucleótidos con los segundos
oligonucleótidos para crear oligonucleótidos superpuestos; y D)
tratar los oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que
se construya una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas ligeras alteradas, en los que las
regiones del marco estructural codificadas por los ácidos nucleicos
que codifican regiones variables de cadenas ligeras alteradas no
están modificadas con respecto a la segunda secuencia de
referencia.
En otras formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para mejorar la afinidad de
unión de una región variable del anticuerpo humanizado mutada, que
comprende: a) proporcionar una secuencia de ácido nucleico que
codifica una primera región variable del anticuerpo humanizado
mutada, comprendiendo la región variable mutada (i) un marco
estructural del anticuerpo humano de tipo natural, (ii) tres
regiones determinantes de complementariedad de cadenas pesadas no
humanas, e (iii) tres regiones determinantes de complementariedad
de cadenas ligeras no humanas, en los que las regiones determinantes
de complementariedad se definen por medio de las definiciones de
Kabat y de Chothia combinadas, en los que al menos una de las
regiones determinantes de complementariedad de cadenas ligeras es
una región determinante de complementariedad de cadenas ligeras que
contiene mutación que comprende al menos un aminoácido diferente en
al menos una posición cuando se compara con la región determinante
de complementariedad no humana correspondiente, y en los que la
primera región variable del anticuerpo mutado tiene una mayor
afinidad de unión que la región variable del anticuerpo no mutado
correspondiente; b) mutar la secuencia del ácido nucleico que
codifica la primera región variable del anticuerpo mutado bajo
condiciones tales que se codifique una segunda región variable del
anticuerpo humanizado mutado, comprendiendo la segunda región
variable del anticuerpo humanizado mutado al menos otro aminoácido
diferente en al menos una posición en la región determinante de
complementariedad de cadenas ligeras que contiene mutación, la
mutación adicional en combinación con la primera mutación dando como
resultado una mayor afinidad de unión. En algunas formas de
realización, la región determinante de complementariedad de cadenas
ligeras que contiene mutación de la primera región variable del
anticuerpo humanizado mutado es la región determinante de
complementariedad 3 (LCDR3). En otras formas de realización, al
menos una de las regiones determinantes de complementariedad de
cadenas pesadas no humanas de la primera región variable del
anticuerpo humanizado mutado comprende una mutación, tal que se
codifique un aminoácido diferente en al menos una posición cuando
se compara con la región determinante de complementariedad no humana
de tipo natural correspondiente. En otras formas de realización, la
mutación de la región determinante de complementariedad de cadenas
pesadas está en HCDR3.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona procedimientos para modificar simultáneamente
al menos una región determinante de complementariedad (CDR) y al
menos una región del marco estructural (FR) mientras se construye
una población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables
alteradas de cadenas pesadas, que comprenden: a) proporcionar una
representación de la primera y segunda secuencia de aminoácidos de
referencia, comprendiendo la primera secuencia de aminoácidos de
referencia la secuencia de una región variable donadora de cadena
pesada, comprendiendo la región variable donadora i) cuatro regiones
del marco estructural y ii) tres regiones determinantes de
complementariedad según se definen por medio de las definiciones de
Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la segunda secuencia de
referencia la secuencia de una región variable aceptora de cadena
pesada que comprende cuatro regiones del marco estructural, según se
definen por medio de las definiciones de Kabat y de Chothia
combinadas; b) sintetizar i) para cada región del marco estructural
a modificar, una población de oligonucleótidos, que codifican cada
una región del marco estructural modificada, o una de sus
porciones, conteniendo la región del marco estructural modificada, o
una de sus porciones, una pluralidad de aminoácidos cambiados en
una o más posiciones cuando se comparan con la región del marco
estructural correspondiente en la secuencia de referencia de la
región variable de cadenas pesadas aceptora, en los que las
posiciones de la región del marco estructural que están cambiadas se
seleccionan entre las posiciones del marco estructural aceptor de
la segunda secuencia de referencia que difieren en la posición
correspondiente comparadas con las posiciones de la región del
marco estructural donador de la primera secuencia de referencia; y
ii) para cada región determinante de complementariedad a modificar,
una población de oligonucleótidos, que codifican cada una, una
región determinante de complementariedad modificada, o una de sus
porciones, en los que la región determinante de complementariedad
modificada comprende un aminoácido diferente en una o más
posiciones cuando se compara con la secuencia de referencia de
aminoácidos de la región determinante de complementariedad donadora
correspondiente; y iii) para cada una de cualquiera de las regiones
del marco estructural restantes y no modificadas, oligonucleótidos
que codifican la región del marco estructural, o una de sus
porciones, que tienen la misma secuencia que la región del marco
estructural correspondiente de la segunda secuencia aceptora de
referencia; y iv) para cada una de cualquiera de las regiones
determinantes de complementariedad restantes y no modificadas,
oligonucleótidos que codifican la región determinante de
complementariedad, o una de sus porciones, que tiene la misma
secuencia que la región determinante de complementariedad
correspondiente de la primera secuencia donadora de referencia, en
los que, los oligonucleótidos individuales desde i) hasta iv) que
codifican porciones adyacentes de la región variable de cadenas
pesadas tienen secuencias superpuestas en sus extremos; y c)
mezclar los oligonucleótidos y las poblaciones de oligonucleótidos
sintetizadas en la etapa b) bajo condiciones tales que las
secuencias superpuestas de oligonucleótidos individuales hibriden
para crear oligonucleótidos superpuestos; y d) tratar los
oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que se forme
una población de nucleótidos que codifican regiones variables de
cadenas pesadas alteradas. En ciertas formas de realización, la
representación de la primera y segunda secuencia de referencia está
en forma electrónica. En otras formas de realización, la región del
marco estructural a modificar se selecciona del grupo constituido
por HFR1, HFR2 y HFR3. En otras formas de realización, la región
determinante de complementariedad a modificar es HCDR3. En otras
formas de realización, el procedimiento comprende además la etapa de
(e) coexpresar la población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas pesadas con un ácido nucleico que
codifica regiones variables de cadenas ligeras para producir una
población diversa de regiones variables heteroméricas alteradas. En
diferentes formas de realización, el procedimiento comprende además
la etapa de (e) coexpresar la población de ácidos nucleicos que
codifican regiones variables de cadenas pesadas con una población
de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de cadenas
ligeras para producir una población diversa de regiones variables
heteroméricas alteradas.
En otras formas de realización, se utilizan los
procedimientos para modificar simultáneamente al menos una región
determinante de complementariedad (CDR) y al menos una región del
marco estructural (FR) mientras se construye una población de
ácidos nucleicos que codifican regiones variables alteradas de
cadenas ligeras, en los que dichos procedimientos comprenden: a)
proporcionar una representación de la primera y segunda secuencia
de aminoácidos de referencia, comprendiendo la primera secuencia de
aminoácidos de referencia la secuencia de una región variable
donadora de cadena ligera, comprendiendo la región variable donadora
i) cuatro regiones del marco estructural y ii) tres regiones
determinantes de complementariedad según se definen por medio de
las definiciones de Kabat y de Chothia combinadas; comprendiendo la
segunda secuencia de referencia la secuencia de una región variable
aceptora de cadena ligera que comprende cuatro regiones del marco
estructural, según se definen por medio de las definiciones de
Kabat y de Chothia combinadas; b) sintetizar i) para cada región
del marco estructural a modificar, una población de
oligonucleótidos, que codifican cada una región del marco
estructural modificada, o una de sus porciones, conteniendo la
región del marco estructural modificada, o una de sus porciones,
una pluralidad de aminoácidos cambiados en una o más posiciones
cuando se comparan con la región del marco estructural
correspondiente en la secuencia de referencia de la región variable
de cadenas ligeras aceptora, en los que las posiciones de la región
del marco estructural que están cambiadas se seleccionan entre las
posiciones del marco estructural aceptor de la segunda secuencia de
referencia que difieren en la posición correspondiente comparadas
con las posiciones de la región del marco estructural donador de la
primera secuencia de referencia; y ii) para cada región
determinante de complementariedad a modificar, una población de
oligonucleótidos, que codifican cada una, una región determinante de
complementariedad modificada, o una de sus porciones, en los que la
región determinante de complementariedad modificada comprende un
aminoácido diferente en una o más posiciones cuando se compara con
la secuencia de referencia de aminoácidos de la región determinante
de complementariedad donadora correspondiente; y iii) para cada una
de cualquiera de las regiones del marco estructural restantes y no
modificadas, oligonucleótidos que codifican la región del marco
estructural, o una de sus porciones, que tienen la misma secuencia
que la región del marco estructural correspondiente de la segunda
secuencia aceptora de referencia; y iv) para cada una de cualquiera
de las regiones determinantes de complementariedad restantes y no
modificadas, oligonucleótidos que codifican la región determinante
de complementariedad, o una de sus porciones, que tiene la misma
secuencia que la región determinante de complementariedad
correspondiente de la primera secuencia donadora de referencia, en
los que, los oligonucleótidos individuales desde i) hasta iv) que
codifican porciones adyacentes de la región variable de cadenas
ligeras tienen secuencias superpuestas en sus extremos; y c)
mezclar los oligonucleótidos y las poblaciones de oligonucleótidos
sintetizadas en la etapa b) bajo condiciones tales que las
secuencias superpuestas de oligonucleótidos individuales hibriden
para crear oligonucleótidos superpuestos; y d) tratar los
oligonucleótidos superpuestos bajo condiciones tales que se forme
una población de nucleótidos que codifican regiones variables de
cadenas ligeras alteradas. En ciertas formas de realización, los
procedimientos comprenden además la etapa de e) coexpresar la
población de ácidos nucleicos que codifican regiones variables de
cadenas ligeras con una población de ácidos nucleicos que codifican
regiones variables de cadenas pesadas para producir una población
diversa de regiones variables heteroméricas alteradas.
La presente invención proporciona anticuerpos
multiespecíficos que comprenden una región Fc variante. Los
anticuerpos multiespecíficos tienen especificidades de unión para al
menos dos antígenos diferentes. Aunque tales moléculas normalmente
sólo se unirán a dos antígenos (es decir, anticuerpos biespecíficos,
BsAbs), los anticuerpos con especificidades adicionales tales como
los anticuerpos triespecíficos están abarcados por esta expresión
cuando se usa en el presente documento. Los ejemplos de BsAbs
incluyen, pero no se limitan a, aquellos con un brazo dirigido
contra un antígeno de una célula tumoral y el otro brazo dirigido
contra una molécula que provoca la citotoxicidad, tal como
anti-Fc\gammaRI/anti-CD15,
anti-p185HER2/Fc\gammaRIII (CD16),
anti-CD3/anti-célula B maligna
(1D10), anti-CD3/anti-p185HER2,
anti-CD3/anti-p97,
anti-CD3/anti-carcinoma de células
renales,
anti-CD3/anti-OVCAR-3,
anti-CD3/L-D1
(anti-carcinoma de colon),
anti-CD3/anti-análogo de la hormona
estimulante de melanocitos, anti-receptor de
EGF/anti-CD3,
anti-CD3/anti-CAMA1,
anti-CD3/anti-CD19,
anti-CD3/MoV18, anti-molécula de
adhesión celular neural (NCAM)/anti-CD3,
anti-proteína de unión al folato
(FBP)/anti-CD3, anti-antígeno
asociado a carcinomas
(AMOC-31)/anti-CD3; BsAbs con un
brazo que se une específicamente a un antígeno tumoral y otro brazo
que se une a una toxina tal como
anti-saporina/anti-ld-1,
antiCD22/anti-saporina,
anti-CD7/anti-saporina,
anti-CD38/anti-saporina,
anti-CEA/anti-cadena A de la ricina,
antiinterferón-a
(IFN-a)/anti-idiotipo de hibridoma,
anti-CEA/anti-alcaloide de la vinca;
BsAbs para profármacos activados por enzima convertidora tales como
anti-CD30/anti-fosfatasa alcalina
(que cataliza la conversión del profármaco fosfato de mitomicina a
alcohol de mitomicina); BsAbs que pueden usarse como agentes
fibrinolíticos tal como
anti-fibrina/anti-activador tisular
del plasminógeno (tPA),
anti-fibrina/anti-activador del
plasminógeno de tipo urocinasa (uPA); BsAbs para dirigir
inmunocomplejos a receptores de superficie celular tales como
anti-lipoproteína de baja densidad
(LDL)/anti-receptor de Fc (por ejemplo,
Fc\gammaRI, Fc\gammaRII o Fc\gammaRIII); BsAbs para uso en la
terapia de enfermedades infecciosas tal como
anti-CD3/anti-virus herpes simplex
(HSV), anti-receptor de células T:complejo
CD3/anti-gripe,
anti-Fc\gammaR/anti-HIV; BsAbs
para la detección de tumores in vitro o in vivo tales
como anti-CEA/anti-EOTUBE,
anti-CEA/anti-DPTA,
anti-p185HER2/anti-hapteno; BsAbs
como adyuvantes de vacunas; y BsAbs como herramientas diagnósticas
tales como anti-IgG de
conejo/anti-ferritina,
anti-peroxidasa de rábano picante
(HRP)/anti-hormona,
anti-somatostatina/anti-sustancia P,
anti-HRP/anti-FITC,
anti-CEA/anti-p-galactosidasa.
Los ejemplos de anticuerpos triespecíficos incluyen, pero no se
limitan a,
anti-CD3/anti-CD4/anti-CD37,
anti-CD3/anti-CD5/anti-CD37
y
anti-CD3/anti-CD8/anti-CD37.
Los anticuerpos biespecíficos pueden prepararse como anticuerpos de
longitud completa o como fragmentos de anticuerpos (por ejemplo
anticuerpos biespecíficos
F(ab')2).
F(ab')2).
Los procedimientos para producir anticuerpos
biespecíficos se conocen en la técnica. La producción tradicional
de anticuerpos biespecíficos de longitud completa se basa en la
coexpresión de dos pares cadena pesada-cadena
ligera de inmunoglobulina, en los que las dos cadenas tienen
especificidades diferentes (por ejemplo, Millstein y col., Nature,
305:537-539 (1983)). Debido a la mezcla aleatoria de
las cadenas pesadas y ligeras de la inmunoglobulina, estos
hibridomas (cuadromas) producen una mezcla potencial de 10 moléculas
de anticuerpos diferentes, de las que solamente una tiene la
estructura biespecífica correcta. La purificación de la molécula
correcta, puede realizarse por medio de etapas de cromatografía de
afinidad. Se describen procedimientos similares en el documento WO
93/08829 y en Traunecker y col., EMBO J.,
10:3655-3659 (1991).
En otro enfoque, se fusionan los dominios
variables de anticuerpos con las especificidades de unión deseadas
(sitios de combinación anticuerpo-antígeno) con las
secuencias de los dominios constantes de inmunoglobulina. La fusión
es de preferencia con un dominio constante de cadena pesada de
inmunoglobulina, que comprende al menos parte de las regiones de la
bisagra, CH2 y CH3. Resulta de preferencia tener presente en al
menos una de las fusiones la primera región constante de la cadena
pesada (CH1) que contiene el sitio necesario para la unión de la
cadena ligera. Los ADN que codifican las fusiones de la cadena
pesada de la inmunoglobulina y, si se desea, la cadena ligera de la
inmunoglobulina, se insertan en vectores de expresión separados, y
se cotransfectan en un organismo huésped adecuado. Esto proporciona
una gran flexibilidad al ajustar las proporciones mutuas de los
tres fragmentos de polipéptido en las formas de realización cuando
las proporciones desiguales de las tres cadenas polipeptídicas
usadas en la construcción proporcionan los rendimientos óptimos. Sin
embargo, es posible insertar las secuencias codificadoras de dos o
de las tres cadenas polipeptídicas en un vector de expresión cuando
la expresión de al menos dos cadenas polipeptídicas en proporciones
iguales da como resultado rendimientos elevados, o cuando las
proporciones no son de interés particular. En una forma de
realización de preferencia de este enfoque, los anticuerpos
biespecíficos están compuestos de una cadena pesada de
inmunoglobulina híbrida con una primera especificidad de unión en
un brazo, y un par cadena pesada-cadena ligera de
inmunoglobulina híbrida (que proporciona una segunda especificidad
de unión) en el otro brazo (véase, por ejemplo el Documento WO
94/04690). Según otro enfoque descrito en el Documento WO 96/27011,
puede producirse la interface entre un par de moléculas de
anticuerpos para maximizar el porcentaje de heterodímeros que se
recuperan del cultivo de células recombinantes. Los anticuerpos
biespecíficos también incluyen anticuerpos entrecruzados o
"heteroconjugados". Por ejemplo, uno de los anticuerpos en el
heteroconjugado puede estar acoplado a la avidina y el otro a la
biotina.
La presente invención también proporciona
moléculas de inmunoadhesinas que comprenden una región Fc variante.
Un tipo de diseño de inmunoadhesinas combina el/los
dominio(s) de unión de la adhesina (por ejemplo el dominio
extracelular (ECD) de un receptor) con la región Fc de una cadena
pesada de inmunoglobulina (por ejemplo, una región Fc variante).
Normalmente, cuando se preparan las inmunoadhesinas de la presente
invención, el ácido nucleico que codifica el dominio de unión de la
adhesina se fusionará con el extremo C-terminal al
ácido nucleico que codifica el extremo N-terminal
de una secuencia de dominio constante de inmunoglobulina, sin
embargo también son posibles las fusiones
N-terminales.
Típicamente, en tales fusiones el polipéptido
quimérico codificado mantendrá al menos los dominios funcionalmente
activos de la bisagra, CH2 y CH3 de la región constante de una
cadena pesada de inmunoglobulina. Las fusiones se producen también
en el extremo C-terminal de la porción Fc de un
dominio constante, o de forma inmediatamente
N-terminal al CH1 de la cadena pesada o de la región
correspondiente de la cadena ligera. El sitio exacto en el que se
produce la fusión no es crítico; se conocen sitios particulares y
pueden seleccionarse para optimizar la actividad biológica, la
secreción o las características de unión de la inmunoadhesina.
En algunas formas de realización, la secuencia
de adhesina se fusiona al extremo N-terminal de la
región Fc variante de la inmunoglobulina G1. Es posible fusionar
toda la región constante de la cadena pesada a la secuencia de
adhesina. Sin embargo, en las formas de realización de preferencia,
se usa en la fusión una secuencia que comienza en la región de la
bisagra justo secuencia arriba del sitio de escisión con papaína que
define químicamente el Fc de IgG (es decir, el residuo 216, tomando
como primer residuo de la región constante de la cadena pesada el
114), o los sitios análogos de otras inmunoglobulinas. En ciertas
formas de realización de preferencia, la secuencia de aminoácidos
de la adhesina se fusiona a (a) la región de la bisagra y CH2 y CH3
o (b) los dominios CH1, bisagra, CH2 y CH3, de una cadena pesada de
IgG. En algunas formas de realización, las inmunoadhesinas son
biespecíficas.
Como alternativa, las secuencias de adhesina
pueden insertarse entre las secuencias de la cadena pesada y de la
cadena ligera de la inmunoglobulina, tal que se obtiene una
inmunoglobulina que comprende una cadena pesada quimérica. En tal
forma de realización, las secuencias de adhesina pueden fusionarse
al extremo 3' de una cadena pesada de inmunoglobulina en cada brazo
de una inmunoglobulina, ya sea entre la bisagra y el dominio CH2, o
entre los dominios CH2 y CH3 (véase, por ejemplo, Hoogenboom, y
col., Mol. Immunol. 28:1027-1037 (1991)).
Aunque la presencia de una cadena ligera de
inmunoglobulina no es necesaria en las inmunoadhesinas de la
presente invención, podría haber presente una cadena ligera de
inmunoglobulina asociada de manera covalente al polipéptido de
fusión adhesina-cadena pesada de inmunoglobulina, o
fusionada directamente a la adhesina. En el primer caso, el ADN que
codifica una cadena ligera de inmunoglobulina se coexpresa
típicamente con el ADN que codifica la proteína de fusión
adhesina-cadena pesada de inmunoglobulina. Tras la
secreción, la cadena pesada híbrida y la cadena ligera estarán
asociadas de forma covalente para proporcionar una estructura
similar a inmunoglobulina que comprende dos pares cadena
pesada-cadena ligera de inmunoglobulina unidas por
enlaces disulfuros. Los procedimientos adecuados para la
preparación de tales estructuras se desvelan, por ejemplo, en la
patente de EE.UU. Nº 4.816.567.
En formas de realización de preferencia, las
inmunoadhesinas se construyen fusionando en el marco de lectura la
secuencia de ADNc que codifica la porción de adhesina a una
secuencia de ADNc de inmunoglobulina. Sin embargo, puede usarse
también la fusión a fragmentos genómicos de inmunoglobulina.
Generalmente, el último tipo de fusión requiere la presencia de
secuencias reguladoras de Ig para la expresión. Los ADNc que
codifican las regiones constantes de la cadena pesada de IgG pueden
aislarse basándose en las secuencias publicadas de las bibliotecas
de ADNc derivadas de linfocitos de bazo o de sangre periférica,
mediante técnicas de hibridación o mediante reacción en cadena de
la polimerasa (PCR). Los ADNc que codifican las partes de
"adhesina" y de inmunoglobulina de la inmunoadhesina se
insertan en tándem en un vector plasmídico que dirige la expresión
eficaz en las células huésped elegidas.
La presente invención también proporciona
secuencias de ácidos nucleicos que codifican variantes de la región
Fc, así como composiciones, vectores y células huésped que
comprenden secuencias de ácidos nucleicos que codifican variantes
de la región Fc. La presente invención también proporciona
procedimientos recombinantes para producir variantes de la región
Fc.
Generalmente, para la producción recombinante de
variantes, se aísla el ácido nucleico que codifica la variante y se
inserta en un vector. Las células huésped pueden transfectarse con
el vector, permitiendo de esta manera que se amplifique la
secuencia del ácido nucleico, y/o que se produzca el péptido
variante. Las secuencias de ácido nucleico que codifican las
variantes del péptido de la presente invención pueden aislarse y
secuenciarse usando procedimientos convencionales (por ejemplo
usando sondas de oligonucleótidos que son capaces de unirse
específicamente al ácido nucleico que codifica la variante).
Generalmente, la secuencia del ácido nucleico que codifica la
variante está unida de manera operativa a otros elementos, tales
como una secuencia señal (por ejemplo secuencia de señal
secretora), un origen de replicación, al menos un gen marcador, un
potenciador, un promotor, o un terminador de la transcripción. En
ciertas formas de realización, las células huésped se transfectan
de manera estable con el ácido nucleico que codifica la variante
para generar una línea celular que expresa una variante particular.
En formas de realización de preferencia, las variantes se expresan
en células CHO, NSO, Sp2/0, PER.C6 o HEK293. Los procedimientos
recombinantes se conocen bien en la técnica.
Las secuencias de ácido nucleico pueden mutarse
tal que puedan producirse las regiones Fc variantes. Por ejemplo,
una secuencia de ácido nucleico que codifica una región Fc original
(por ejemplo SEC ID Nº: 32) puede mutarse de manera tal que cambie
al menos un aminoácido cuando se exprese la secuencia del ácido
nucleico. También, las secuencias del ácido nucleico que codifican
al menos una porción de una región Fc original pueden mutarse para
producir secuencias de aminoácidos que comprenden al menos una
porción de una variante de la región Fc. Por ejemplo, puede mutarse
SEC ID Nº: 32, tal que dé como resultado al menos una secuencia de
aminoácidos (véase, por ejemplo, SEC ID Nº: 38, SEC ID Nº: 39, SEC
ID Nº: 40, SEC ID Nº: 41, SEC ID Nº: 42, SEC ID Nº: 43, SEC ID Nº:
44, SEC ID Nº: 45, SEC ID Nº: 46, SEC ID Nº: 47, SEC ID Nº: 48, SEC
ID Nº: 49, SEC ID Nº: 50, SEC ID Nº: 51, SEC ID Nº: 52, SEC ID Nº:
53, SEC ID Nº: 54, SEC ID Nº: 55, y SEC ID Nº: 56).
En ciertas formas de realización, se utiliza la
síntesis basada en codones para generar secuencias mutadas. Los
ejemplos de síntesis basada en codones incluyen, por ejemplo, los
descritos en las Patentes de EEUU Nº 5.264.563. 5.523.388 y
5.808.022. Brevemente, la síntesis basada en codones puede llevarse
a cabo acoplando secuencialmente los monómeros en soportes
separados para formar al menos dos tripletes diferentes. El
acoplamiento puede llevarse a cabo en recipientes de reacción
separados, mezclando a continuación los soportes de los recipientes
de reacción, y separando los soportes mezclados en dos o más
recipientes de reacción separados, y repitiendo las etapas de
acoplamiento, mezclado y separación una o más veces en los
recipientes de reacción, finalizando con una etapa de mezclado o
separación. Además, los oligonucleótidos pueden escindirse de los
soportes.
En algunas formas de realización, la presente
invención proporciona las formulaciones terapéuticas que comprenden
las variantes descritas en el presente documento. No es la intención
que la presente invención esté limitada por la naturaleza
particular de la composición terapéutica. Por ejemplo, tales
composiciones pueden incluir una variante de polipéptido (o una de
su porciones), proporcionada junto con líquidos, geles, vehículos
sólidos, diluyentes, adyuvantes y excipientes fisiológicamente
tolerables, y combinaciones de los mismos (Véase, por ejemplo,
Remington's Pharmaceutical Sciences 16ª edition, Osol, A. Ed.
(1980).
Además, las variantes de polipéptido pueden
usarse junto con otros agentes terapéuticos, incluidos, pero no
limitados a, salicilatos, esteroides, inmunosupresores, anticuerpos
o antibióticos. Los agentes terapéuticos particulares que pueden
usarse con las variantes de la presente invención incluyen, pero no
se limitan a, los siguientes agentes: compuestos de azobenceno
(Patente de EEUU Nº 4.312.806), derivados de rodamina sustituidos
con bencilo (Patente de EEUU Nº 5.216.002), sales de cinc de
L-carnosina (Patente de EEUU Nº 5.238.931),
3-fenil-5-carboxipirazoles
e isotiazoles (Patente de EEUU Nº 5.294.630), IL-10
(Patente de EEUU Nº 5.368.854), inhibidores de la síntesis de
quinolina leucotrienos (Patente de EEUU Nº 5.391.555),
2'-halo-2'desoxiadenosina (Patente
de EEUU Nº 5.506.213), compuestos de fenol y benzamida (Patente de
EEUU Nº 5.552.439), tributirina (Patente de EEUU Nº 5.569.680),
ciertos péptidos (Patente de EEUU Nº 5.756.449), ácidos
omega-3 poliinsaturados (Patente de EEUU Nº
5.792.795), bloqueadores de VLA-4 (Patente de EEUU
Nº 5.932.214), metasulfobenzoato de prednisolona (Patente de EEUU Nº
5.834.021), agentes de retención de citocinas (Patente de EEUU Nº
5.888.969) y nicotina (Patente de EEUU Nº 5.889.028).
Las variantes de polipéptido pueden usarse junto
con agentes que reducen la viabilidad o el potencial proliferativo
de una célula. Los agentes que reducen la viabilidad o el potencial
proliferativo de una célula pueden actuar en una variedad de formas
incluidas, por ejemplo, la inhibición de la síntesis del ADN, la
inhibición de la división celular, la inducción de la apoptosis, o
la inducción de la muerte celular no apoptótica. Los ejemplos
específicos de agentes citotóxicos y citostáticos, incluyen, pero no
se limitan a, la proteína antiviral del Pokeweed, abrina, ricina, y
cada una de sus cadenas A, doxorrubicina, cisplastino,
yodo-131, itrio-90,
renio-188, bismuto-212, taxol,
5-fluorouracilo VP-16, bleomicina,
metotrexato, vindesina, adriamicina, vincristina, vinblastina,
BCNU, mitomicina y ciclofosfamida y ciertas citocinas tales como
TNF-\alpha y TNF-\beta. Por
consiguiente, los agentes citotóxicos o citoestáticos pueden
incluir, por ejemplo, radionucleidos, fármacos quimioterapéuticos,
proteínas y lectinas.
Las composiciones terapéuticas pueden contener,
por ejemplo, aditivos normalmente utilizados tales como ligantes,
cargas, vehículos, conservantes, agentes estabilizadores, emulsivos,
tampones y excipientes como, por ejemplo, manitol, lactosa,
almidón, estearato de magnesio, sacarina sódica, celulosa, carbonato
de magnesio, de calidad farmacéutica, y similares. Estas
composiciones contienen típicamente 1%-95% del componente activo, de
preferencia 2%-70% del componente activo.
Las variantes de polipéptido de la presente
invención pueden también mezclarse con diluyentes o excipientes que
son compatibles y fisiológicamente tolerables. Los diluyentes y
excipientes adecuados son, por ejemplo, agua, disolución salina,
dextrosa, glicerol, y similares, y sus combinaciones. Además, si se
desea, las composiciones pueden contener cantidades menores de
sustancias auxiliares tales como agentes humectantes o emulsivos,
estabilizadores o agentes tamponadores del pH.
En algunas formas de realización, las
composiciones terapéuticas de la presente invención se preparan como
disoluciones líquidas o suspensiones, como vaporizaciones, o en
formas sólidas. Las formulaciones orales incluyen usualmente
aditivos usados normalmente tales como ligantes, cargas, vehículos,
conservantes, estabilizadores, emulsivos, tampones y excipientes
como, por ejemplo, manitol, lactosa, almidón, estearato de magnesio,
sacarina sódica, celulosa, carbonato de magnesio, de calidad
farmacéutica, y similares. Estas composiciones toman la forma de
disoluciones, suspensiones, comprimidos, píldoras, cápsulas,
formulaciones de liberación sostenida, o polvos y contienen
típicamente 1%-95% del componente activo, de preferencia 2%-70%.Un
ejemplo de una composición oral útil para administrar las
composiciones terapéuticas de la presente invención se describe en
la Patente de EEUU Nº 5.643.602.
Otras formulaciones que son adecuadas para otras
formas de administración, tales como la administración tópica,
incluyen pomadas, tinturas, cremas, lociones, parches transdérmicos,
y supositorios. Para las pomadas y las cremas, los ligantes,
vehículos y excipientes tradicionales incluyen, por ejemplo,
polietilenglicoles o triglicéridos. Un ejemplo de un procedimiento
de administración tópica se describe en la Patente de EEUU Nº
5.834.016. Pueden utilizarse también otros procedimientos de
administración por medio de liposomas (Véase, por ejemplo, Patentes
de EEUU Nº 5.851.548 y 5.711.964).
Las formulaciones pueden también contener más de
un compuesto activo según sea necesario para la indicación
particular a tratar, de preferencia aquellos con actividades
complementarias que no tienen efecto adverso uno con otro. Tales
moléculas están presentes de manera adecuada en la combinación en
cantidades que son eficaces para el fin destinado.
También pueden prepararse preparaciones de
liberación sostenida. Los ejemplos de preparaciones de liberación
sostenida adecuados incluyen matrices semipermeables de polímeros
hidrófobos sólidos que contienen la variante de polipéptido, cuyas
matrices están en la forma de artículos de diferente formato, por
ejemplo, películas o microcápsulas. Los ejemplos de matrices de
liberación sostenida, incluyen, pero no se limitan a, poliésteres,
hidrogeles (por ejemplo, poli
(2-hidroxietilmetacrilato), o poli (vinilalcohol)),
polilactidas, copolímeros de ácido L-glutámico y
\gamma etil-L-glutamato,
copolímeros de etileno-acetato de vinilo no
degradables, de ácido láctico-ácido glicólico degradables tales
como LUPRON DEPOT (microesferas inyectables compuestas de
copolímero de ácido láctico-ácido glicólico y acetato de
leuprolida), y ácido
poli-D-(-)-3-hidroxibutírico.
Mientras que los polímeros tales como
etileno-acetato de vinilo y ácido láctico-ácido
glicólico permiten la liberación de moléculas durante más de 100
días, ciertos hidrogeles liberan proteínas durante períodos de
tiempo más cortos.
Las variantes de polipéptido de la presente
invención pueden usarse para tratar un sujeto. Tal tratamiento
puede administrarse a un sujeto con una enfermedad, o puede
administrarse de manera profiláctica a un sujeto (por ejemplo a un
sujeto con predisposición a una enfermedad). Los ejemplos de
afecciones que pueden tratarse incluyen, pero no se limitan a,
cáncer (por ejemplo donde la variante de polipéptido se une al
receptor HER2, CD20 o al factor de crecimiento endotelial vascular
(VEGF)); afecciones alérgicas tales como el asma (con un anticuerpo
anti-IgE); y trastornos mediados por
LFA-1 (por ejemplo donde la variante de polipéptido
es un anticuerpo anti-LFA-1 o
anti-ICAM-1), etc.
En formas de realización de preferencia, las
variantes usadas para tratar sujetos comprenden anticuerpos o
inmunoadhesinas. También en formas de realización de preferencia,
las enfermedades tratadas son enfermedades sensibles a anticuerpos
o inmunoadhesinas. Los ejemplos de enfermedades sensibles a
anticuerpos incluyen las enfermedades y afecciones médicas tales
como: linfoma (que se mostró que es tratable con RITUXAN, un
anticuerpo anti-CD20), enfermedades infecciosas
(que se mostró que son tratables con SYNAGIS, un anticuerpo dirigido
contra la proteína F del virus sincitial respiratorio); transplante
renal (ZENAPAX, un anticuerpo anti receptor de
IL-2, ha mostrado ser útil), enfermedad de Crohn y
artritis reumatoide (que se mostró que son tratables con REMICADE,
un anticuerpo anti-TNF alfa), carcinoma de mama (que
se mostró que es tratable con HERCEPTIN, un anticuerpo
anti-HER2) y cáncer del colon (que se mostró que es
tratable con EDRECOLOMAB, un anticuerpo de
anti-17-1A).
En algunas formas de realización, se utiliza una
variante de polipéptido con actividad de ADCC mejorada (por ejemplo
el P247L) en el tratamiento de enfermedades o trastornos donde se
deseada la destrucción o eliminación de tejido de microorganismos
extraños. Por ejemplo, la variante puede usarse para tratar el
cáncer; trastornos inflamatorios; infecciones (por ejemplo
infecciones bacterianas, virales, fúngicas o por levaduras); y otras
condiciones (tales como el bocio) en los que se desea la
eliminación de tejidos. En otras formas de realización, la variante
de polipéptido tiene actividad de ADCC disminuida (por ejemplo la
variante 1332R o 1332K). Tales variantes pueden usarse para tratar
enfermedades o trastornos donde se desea un polipéptido que contiene
región Fc con semivida prolongada, pero el polipéptido de
preferencia no tiene funciones efectoras indeseables. Por ejemplo,
el polipéptido que contiene región Fc puede ser un anticuerpo
anti-factor tisular (TF); un anticuerpo
anti-IgE; y un anticuerpo
anti-integrina (por ejemplo un anticuerpo
anti-\alpha4\beta7). El mecanismo de acción
deseado de tales polipéptidos que contienen región Fc puede ser el
bloqueo de pares de unión ligando-receptor. Además,
el polipéptido que contiene región Fc con actividad de ADCC
disminuida puede ser un anticuerpo agonista.
Las variantes de polipéptido de la presente
invención pueden administrarse por cualquier medio adecuado,
incluidas la administración parenteral, subcutánea, tópica,
intraperitoneal, intrapulmonar e intranasal, y, la administración
intralesión (por ejemplo para el tratamiento inmunosupresor local).
Las infusiones parenterales incluyen la administración
intramuscular, intravenosa, intrarterial, intraperitoneal, o
subcutánea. Además, la variante de polipéptido se administrada de
manera adecuada por medio de infusión pulsada, en particular con
dosis decrecientes de la variante de polipéptido. De preferencia,
la dosificación se administra por medio de inyecciones, de más
preferencia inyecciones intravenosas o subcutáneas, dependiendo en
parte de si la administración es breve o crónica.
Para la prevención o tratamiento de la
enfermedad, la dosificación adecuada de la variante de polipéptido
dependerá del tipo de enfermedad a tratar, de la gravedad y el curso
de la enfermedad, de si la variante de polipéptido se administra
con fines preventivos o terapéuticos, de la terapia previa, de los
antecedentes clínicos del paciente y de la respuesta a la variante
de polipéptido, y según el criterio del médico actuante. La
variante de polipéptido se administra de manera adecuada al paciente
de una vez o durante una serie de tratamientos.
Por ejemplo, según el tipo y la gravedad de la
enfermedad, aproximadamente 1 \mug/kg hasta 15 mg/kg (por
ejemplo, 0,120 mg/kg) de la variante de polipéptido es una
dosificación candidata inicial para la administración al paciente,
ya sea, por ejemplo, por una o más administraciones separadas, o por
infusión continua. Una dosis diaria típica variará desde
aproximadamente 1 \mug/kg hasta 100 mg/kg o más, dependiendo de
los factores mencionados anteriormente. Para las administraciones
repetidas durante varios días o más, según la afección, el
tratamiento se mantiene hasta que los síntomas se reducen de manera
suficiente o se eliminan. El progreso de esta terapia se controla
fácilmente por medio de técnicas y ensayos convencionales, y puede
usarse para ajustar la dosis para alcanzar un efecto
terapéutico.
Una cantidad terapéuticamente eficaz de una
variante de polipéptido a administrar es el nivel de dosificación
requerido para un paciente tal que se reduzcan los síntomas de la
enfermedad que se está tratando. La variante de polipéptido no
necesariamente se formula, pero sí opcionalmente, con uno o más
agentes actualmente usados para prevenir o tratar el trastorno en
cuestión. La cantidad eficaz de tales otros agentes depende de la
cantidad de variante de polipéptido presente en la formulación, del
tipo de trastorno o tratamiento, y de otros distintos factores
analizados anteriormente.
Las variantes, y las secuencias de ácidos
nucleicos que codifican variantes, de la presente invención pueden
usarse de muchas formas. Por ejemplo, las variantes de la presente
invención pueden usarse en ensayos de selección de fármacos. Por
ejemplo, pueden evaluarse compuestos candidatos por su capacidad
para alterar o interferir con las funciones efectoras de Fc
poniendo en contacto una variante con el compuesto candidato y
determinando la unión del compuesto candidato a la variante. La
variante puede inmovilizarse usando procedimientos conocidos en la
técnica tales como la unión de una proteína de fusión
GST-variante a una perla polimérica que contiene
glutatión. Se construye un gen quimérico que codifica una proteína
de fusión de GST fusionando el ADN que codifica la variante de
interés al ADN que codifica el extremo carboxilo terminal de GST
(Véase por ejemplo, Smith y col., Gene 67: 31 [1988]). A
continuación se transforma la construcción de fusión en un sistema
de expresión adecuado (por ejemplo, E. coli XA90) en el que
puede inducirse la expresión de la proteína de fusión de GST con
isopropil-\beta-D-tiogalactopiranósido
(IPTG). La inducción con IPTG dará lugar a la proteína de fusión
como el principal constituyente de las proteínas celulares, soluble.
Las proteínas de fusión pueden purificarse por medio de
procedimientos conocidos por los expertos en la técnica, incluida la
purificación por medio de cromatografía de afinidad de glutatión.
La unión del compuesto candidato a la variante se correlaciona con
la capacidad del compuesto para interrumpir una o más funciones
efectoras.
En otro procedimiento de selección, la variante
o un FcR seleccionado se inmovilizan usando procedimientos
conocidos en la técnica, tal como la adsorción sobre placas de
microvaloración de plástico o la unión específica de una proteína
de fusión de GST a una perla polimérica que contiene glutatión. Por
ejemplo, se une GST-variante a perlas de
glutatión-Sepharose. La variante inmovilizada se
pone a continuación en contacto con un receptor de Fc y un
compuesto candidato. A continuación se elimina el péptido no unido y
se solubiliza el complejo y se analiza para determinar la cantidad
de péptido marcado unido. Una disminución en la unión es una
indicación de que el compuesto candidato inhibe la interacción de
la variante con el receptor de Fc. Este procedimiento de selección
es particularmente útil con variantes de la presente invención que
muestran un nivel aumentado de unión al receptor de Fc (por
ejemplo, mientras que muchos receptores de Fc originales son
receptores de baja afinidad, tales como Fc\gammaRIII,
Fc\gammaRIIb, y Fc\gammaRIIa). Una variación de este
procedimiento permite seleccionar los compuestos que son capaces de
interrumpir un complejo variante/receptor de Fc previamente
formado. Por ejemplo, en algunas formas de realización se inmoviliza
un complejo que comprende una variante unida a un receptor de Fc
como se describe anteriormente y se pone en contacto con un
compuesto candidato. La disolución del complejo por el compuesto
candidato se correlaciona con la capacidad del compuesto para
interrumpir o inhibir la interacción entre la variante que se está
probando y el receptor de Fc. Al respecto, pueden identificarse
compuestos (por ejemplo compuestos útiles para tratar enfermedades
humanas, tales como enfermedades autoinmunes) con potencial
terapéutico (por ejemplo en seres humanos).
Otra técnica para seleccionar fármacos
proporciona una selección de alto rendimiento para compuestos que
tienen afinidad de unión adecuada a péptidos variantes y está
descrita en detalle en el Documento WO 84/03564. Brevemente, se
sintetizan grandes cantidades de diferentes compuestos de prueba de
péptidos pequeños en un substrato sólido, tales como alfileres
plásticos o alguna otra superficie. Los compuestos peptídicos de
prueba se hacen reaccionar a continuación con péptidos variantes y
se lavan. Los péptidos variantes unidos se detectan a continuación
por medio de procedimientos bien conocidos en la técnica.
Otra técnica utiliza anticuerpos dirigidos a
péptidos variantes. Tales anticuerpos capaces de unirse
específicamente a los péptidos variantes compiten con un compuesto
de prueba por la unión a una variante dada. De esta manera, los
anticuerpos pueden usarse para detectar la presencia de cualquier
péptido que comparte uno o más determinantes antigénicos del
péptido variante.
La presente invención contempla muchos otros
medios para seleccionar compuestos. Los ejemplos proporcionados
anteriormente se presentan solamente para ilustrar una variedad de
técnicas disponibles. Un experto en la técnica apreciará que pueden
usarse muchos otros procedimientos de selección.
En particular, la presente invención contempla
el uso de líneas celulares transfectadas con ácido nucleico que
codifica al menos una variante de la región Fc para seleccionar
compuestos según la actividad, y en particular para seleccionar
compuestos de bibliotecas combinatorias con alto rendimiento (por
ejemplo, bibliotecas que contienen más de 10^{4} compuestos). Las
líneas celulares de la presente invención pueden usarse en una
variedad de procedimientos de selección.
Las variantes de la presente invención pueden
utilizarse como un agente de purificación por afinidad. Por
ejemplo, la variante puede inmovilizarse en una fase sólida tal como
una resina Sephadex o un filtro de papel, usando procedimientos
bien conocidos en la técnica. A continuación se pone en contacto la
variante inmovilizada con una muestra que contiene el antígeno a
purificar, y a partir de entonces se lava el soporte con un
disolvente adecuado que eliminará sustancialmente todo el material
en la muestra excepto el antígeno a purificar, que está unido a la
variante de polipéptido inmovilizada. Finalmente, se lava el soporte
con otro disolvente adecuado, tal como tampón de glicina, pH 5,0,
que liberará el antígeno de la variante de polipéptido.
La variante de polipéptido puede también ser
útil en ensayos de diagnóstico (por ejemplo, para detectar la
expresión de un antígeno de interés en células específicas, tejidos
o en suero). Para aplicaciones de diagnóstico, la variante se
marcará típicamente con restos detectables (tales marcadores son
también útiles en los ensayos de región Fc descritos
anteriormente). Están disponibles numerosos marcadores, incluidos,
pero no limitados a, radioisótopos (por ejemplo, ^{35}S,
^{14}C, ^{125}I, ^{3}H y ^{131}I), marcadores fluorescentes
(por ejemplo quelatos de tierras raras (quelatos de europio) o
fluoresceína y sus derivados, rodamina y sus derivados, dansilo,
Lissamine, ficoeritrina y rojo de Tejas), y diversos marcadores
sustratos de enzimas (véase, por ejemplo, Patente de EEUU Nº
4.275.149, y luciferasa, luciferina,
2,3-dihidroftalazinedionas, malato deshidrogenasa,
ureasa, peroxidasa tal como peroxidasa del rábano picante (HRPO),
fosfatasa alcalina, \beta-galactosidasa,
glucoamilasa, lisozima, oxidasas de sacáridos (por ejemplo, oxidasa
de la glucosa, oxidasa de la galactosa, y deshidrogenasa de
glucosa-6-fosfato), oxidasas
heterocíclicas (tales como la uricasa y la oxidasa de xantina),
lactoperoxidasa, microperoxidasa, y similares). Los ejemplos de las
combinaciones de enzima-sustrato incluyen, por
ejemplo: (i) peroxidasa de rábano picante (HRPO) con peroxidasa de
hidrógeno como sustrato, en la que la peroxidasa de hidrógeno oxida
un precursor de colorante (por ejemplo, diamina de ortofenileno
(OPD) o clorhidrato de
3,3',5,5'-tetrametilbencidina (TMB)); (ii) fosfatasa
alcalina (AP) con para-Nitrofenil fosfato como
sustrato cromogénico; y (iii) -D-galactosidasa
(R-D-Gai) con un sustrato
cromogénico o un substrato fluorogénico.
Las variantes de la presente invención pueden
utilizarse también para ensayos de diagnóstico in vivo. Por
ejemplo, se marca la variante de polipéptido con un radionucleido de
manera que pueda localizarse el antígeno o las células que lo
expresan usando inmunocentellografía.
Los siguientes ejemplos se proporcionan para
demostrar e ilustrar más ciertas formas de realización de
preferencia y aspectos de la presente invención y no deben
considerarse limitantes de su ámbito.
En la divulgación experimental siguiente, se
aplican las siguientes abreviaturas: N (normal); M (molar); mM
(milimolar); \muM (micromolar); mol (moles); mmol (milimoles);
\mumol (micromoles); mnol (nanomoles); pmol (picomoles); g
(gramos); mg (miligramos); \mug (microgramos); ng (nanogramos); l
o L (litros); ml (mililitros); \mul (microlitros); cm
(centímetros); milímetro (milímetros); \mum (micrometros); nm
(nanometros); DS (sulfato de dextrano); y C (grados
centígrados).
Este ejemplo describe cómo se seleccionaron las
variantes en un ensayo de ADCC. Todas las variantes seleccionadas
fueron anticuerpos anti-CD20 (basado en la
especificidad de la región variable).
Se obtienen aproximadamente 50 ml de sangre
periférica de un donador sano y se diluyen 1:2 con solución salina
tamponada de fosfato (PBS), pH 7,0. Se mezclan las disoluciones
agitando suavemente el tubo. Se forma cuidadosamente una capa con
aproximadamente 12 ml de Histopaque-1077 (Sigma
número de catálogo 1077-1) por debajo de la muestra
de sangre diluida seguido por la centrifugación en una centrífuga
Sorvall RT6000B con rotor basculante a 1000 rpm durante 10 minutos
con el freno desconectado. Se elimina la fase superior del gradiente
por aspiración y la interfase de color blanco, que contiene las
PBMC, se recoge y se lava 3 veces con disolución salina equilibrada
de Hanks (Gibco número de catálogo 14025-092). Se
suspende el sedimento celular lavado en aproximadamente 20 ml de
medio RPMI 1640 que contiene suero fetal de ternera al 10% (FBS)
(Omega Scientific número de catálogo FB-01). Las
PBMC resuspendidas se separan en dos matraces de cultivo
T-175, y se añaden 30 ml de RPMI que contiene el
FBS al 10% a cada uno seguido por la incubación durante la noche en
una incubadora a 37ºC y CO_{2} al 5%. Al día siguiente se recogen
las PBMC no adheridas en tubos Falcón de 50 ml, se centrifuga como
anteriormente y se resuspende en RPMI que contiene FBS al 1% sin
rojo de fenol. Se diluye una pequeña porción de las células
resuspendidas diez veces y se cuentan utilizando un hemocitómetro.
Las PBMC restantes se colocan en la incubadora hasta que es
necesario.
Se obtuvieron las líneas de células B que
expresan CD20, Wil.2 y SKW6.4 de la ATCC y se cultivaron según las
recomendaciones. Un día antes del uso, las células se dividieron dos
veces. Al día siguiente se ajusta el número de células hasta 4 x
10^{5} células/ml y se añaden alícuotas de 50 \mul (20.000
células/pocillo) a una placa de cultivo tisular de 96 pocillos.
Antes de la selección, las variantes de IgG se
expresan y cuantifican usando un ensayo de inmunoabsorción ligado a
enzimas (ELISA) convencional. Para la selección de ADCC primaria de
único punto se diluyen las variantes de IgG hasta 40 ng/ml en el
medio RPMI que contiene FBS al 1% sin rojo de fenol. La
concentración final de IgG en el ensayo se diluirá 4 veces (es
decir 10 ng/ml de concentración final). Se añaden alícuotas de
cincuenta microlitros de IgG a las células diana y se incuba
durante aproximadamente 15 minutos a 37ºC antes de añadir las
células efectoras a las células diana opsonizadas.
Cuando se realizan las valoraciones de IgG, la
concentración de IgG se varía en el intervalo entre aproximadamente
0,0001 y 1 \mug/ml. Se preparan diluciones de IgG usando una placa
de microvaloración de 96 pocillos diluyendo las muestras en RPMI
que contiene FBS al 1% sin rojo de fenol. A continuación se añaden
las muestras de IgG diluidas a la placa de ensayo que contiene las
células diana.
La concentración de las PBMC se ajusta para que
la proporción de efector a diana esté en el intervalo de
10-20:1 (es decir 2-4 x 10^{6}
células/ml). Se añaden cien microlitros de las PBMC resuspendidas a
cada pocillo de las células diana opsonizadas. Las placas se
incuban a 37ºC en presencia de CO_{2} al 5% durante
3-4 horas.
La lisis de células diana se mide detectando la
liberación de la enzima lactato deshidrogenasa desde el citoplasma
de las células dañadas hacia el sobrenadante del cultivo. Tras la
incubación de las células diana opsonizadas con las células
efectoras, se centrifugan las placas de ensayo a 2000 rpm durante 5
minutos. Se retiran cuidadosamente aproximadamente de 75 \mul del
sobrenadante del cultivo celular evitando las células y los detritos
sedimentados. Este sobrenadante se añade directamente a una placa
de microvaloración y a esta se le añaden 75 \mul de reactivo de
detección del de LDH (Roche número de catálogo 1 644 793). A
continuación se incuba la placa durante aproximadamente
15-30 minutos y se lee la absorbancia a 490 nm
usando un lector de microplacas Molecular Devices Vmax Kinetic.
Todos los ensayos de selección de ADCC de punto
único se analizan por duplicado. Cada placa de ensayo contiene
controles para la lisis espontánea de la diana, efector espontáneo
más lisis de la diana en ausencia de IgG y lisis total de células
diana. La lisis total de células diana se consigue por medio de la
adición de Tritón X-100 al 1% a las células diana.
En cada placa se incluyen tres controles de tipo natural y se
promedian las señales del ensayo de ADCC. El valor de fondo,
obtenido de los controles de lisis espontánea, se resta de cada
muestra. El valor de fondo, obtenido de la IgG diluida, se resta de
cada muestra. Los datos se convierten de valores de absorbancia a
porcentaje de lisis específica basándose en los controles de lisis
espontánea y total. El porcentaje de lisis específica se calcula a
partir de la siguiente ecuación: porcentaje de lisis específica =
(A490 experimental-A490 del fondo)/(A490
máxima-A490 del fondo) X 100, donde A490 del fondo
es la suma de la A490 obtenida del efector y de las células diana en
ausencia de IgG y el fondo de IgG por LDH contaminante en los
sobrenadantes de IgG brutos. El porcentaje de actividad de la
variante de Fc se normaliza con relación a los controles de tipo
natural promediados. Se promedia el porcentaje de actividad
normalizada para placas de ensayo por duplicado y se calcula la
desviación estándar entre placas de ensayo individuales para cada
muestra.
En la Tabla 2 se muestra la actividad relativa
específica de ADCC. Los valores de CDC informados en esta tabla se
generaron como se describe en el Ejemplo 4 y los valores del ensayo
de unión de FcRn en esta tabla se generaron como se describe en el
Ejemplo 5.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 2
(continuación)
En este experimento, se opsonizaron las células
SKW6.4 usando variantes de la región Fc de IgG de aminoácido único
y de doble aminoácido seguido por la adición de PBMC en una relación
de 15:1. La placa de ensayo se incubó a 37ºC en presencia de
CO_{2} al 5% durante 3 horas, seguido por centrifugación. Se
recogió una porción del sobrenadante y se transfirió a una placa de
microvaloración y se detectó la actividad de LDH en el sobrenadante
por medio de la adición de un volumen igual de sustrato de LDH. Tras
el desarrollo del color se leyó la absorbancia a 490 nm. Se midió
el fondo debido a la LDH contaminante en los sobrenadantes de IgG
brutos y se restaron estos valores de fondo de los datos de A490 sin
tratar. Estos datos revelan que comparado con el anticuerpo
anti-CD20 de tipo natural, la actividad de ADCC de
las variantes de aminoácido único A330K, A330R e I332E está
aumentada. La combinación de A330K o A330R con la variante I332E
mejora más la actividad de ADCC. Una IgG no específica no muestra
actividad bajo estas condiciones de ensayo. La actividad de la
variante I332 puede aumentarse más con glicosilación alterada
(aumentando el contenido del perfil de GlcNAc, por ejemplo).
Los datos de ADCC representativos se obtuvieron
usando IgG purificada. La representación gráfica mostró el
porcentaje de citotoxicidad frente a la concentración de IgG para
una IgG no específica, anti-CD20 de tipo natural y
las variantes de la región Fc I332D e I332E.
El porcentaje de citotoxicidad se calculó
basándose en la siguiente ecuación: citotoxicidad % = (A490
experimental-A490 del fondo)/(A490
máxima-A490 del fondo) X 100, donde A490 del fondo
se obtiene del efector y de las células diana en ausencia de IgG.
Los datos muestran que la actividad de ADCC de las variantes I332D e
I332E está aumentada comparada con el tipo natural. Las células
diana usadas en este experimento fueron SKW6.4 y se usó una
relación de efector a diana de 15:1 en un ensayo de ADCC
convencional de 3 horas.
La actividad de ADCC con esta especificidad
particular de anti-CD20 y las líneas celulares
Wil-2 y SKW6.4 es independiente de la afinidad de
la región variable.
La porción extracelular del receptor RI de Fc
gamma humano (CD64) con una etiqueta 6-his en el
extremo C terminal añadida en lugar del dominio transmembranario
putativo se expresó en células de HEK-293A y se
purificó usando una columna de Ni. El receptor se recubrió durante
la noche a 4ºC en una placa de ELISA y posteriormente se bloqueó la
placa usando Superblock. Tras bloquear y lavar, se prepararon
diluciones de IgG y se añadieron a la placa recubierta con el
receptor seguido por la incubación a 37ºC durante 2 horas. La IgG no
unida se eliminó por medio de lavado y el anticuerpo unido se
detectó usando una dilución 1:1000 de un anticuerpo secundario
anti-kappa humana conjugado con fosfatasa alcalina.
Tras el lavado se detectó la IgG unida por adición del substrato de
fosfatasa (monofosfato de fenolftaleína (PPMP) (JBL Scientific) con
la absorbancia determinada colorimétricamente a 560 nm con un
lector de microplacas VMAX (Molecular Devices, Sunnyvale, CA). Los
datos se grafican como logaritmo de la concentración de IgG frente
a absorbancia.
Este ejemplo describe la selección de variantes
para depleción de células B en un ensayo de sangre entera.
Se aisló ADN genómico de muestras de sangre
periférica usando el kit QiaAmp (Qiagen, número de catálogo 51104).
Se amplificó Fc\gammaRIIA por medio de PCR usando los cebadores
(5' GGAAAATCCCAGAAATTCTCGC 3'-SEC ID Nº: 61)
y (5' CAACAGCCTGAC TACCTATTACGCGGG 3'-SEC ID
Nº: 62). Los productos de la PCR se purificaron usando un kit de
purificación de PCR MinElute (Qiagen, número de catálogo 28006) y se
digirieron con la enzima de restricción, BstUI, a 60ºC durante 12
horas. Las muestras digeridas se analizaron en geles de agarosa al
3%. Todos los productos de PCR se cortan en un sitio interno de
BstUI independiente del genotipo H o R. Los productos que poseen el
alelo R se cortan en un sitio de BstUI adicional. Esto da como
resultado la identificación del genotipo H/H por un fragmento de
337 pb, siendo identificado H/R por dos fragmentos de 337 pb y 316
pb y R/R identificado por un fragmento de 316 pb.
Se aisló ADN genómico de muestras de sangre
periférica usando el kit QiaAmp (Qiagen, número de catálogo 51104).
Se amplificó Fc\gammaRIIIA a partir del ADN genómico por medio de
PCR usando los cebadores (5' ATATT
TACAGAATGGCA 3'-SEC ID Nº: 63) y (5' GGTGATGTTCACAGTCTCTGAAGACACATTTTTACTGTCAA 3'-SEC ID Nº: 64). Los productos de la PCR se purificaron usando un kit de purificación de PCR MinElute (Qiagen, número de catálogo 28006) y se digirieron con la enzima de restricción, HincII, a 37ºC durante 16 horas. Las muestras digeridas se analizaron en geles de agarosa NuSieve al 3%. HincII corta el alelo V pero no el alelo F. Por consiguiente F/F da un fragmento de 148 pb, F/V da tres fragmentos de 148, 109 y 39 pb y V/V da dos fragmentos de 109 y 39 pb.
TACAGAATGGCA 3'-SEC ID Nº: 63) y (5' GGTGATGTTCACAGTCTCTGAAGACACATTTTTACTGTCAA 3'-SEC ID Nº: 64). Los productos de la PCR se purificaron usando un kit de purificación de PCR MinElute (Qiagen, número de catálogo 28006) y se digirieron con la enzima de restricción, HincII, a 37ºC durante 16 horas. Las muestras digeridas se analizaron en geles de agarosa NuSieve al 3%. HincII corta el alelo V pero no el alelo F. Por consiguiente F/F da un fragmento de 148 pb, F/V da tres fragmentos de 148, 109 y 39 pb y V/V da dos fragmentos de 109 y 39 pb.
Se extrajo sangre periférica heparinizada de
voluntarios sanos. La sangre se mezcló con la variante, Rituxan o
una IgG no específica (control negativo) diluidos en tampón FACS
(disolución salina tamponada de fosfato más suero fetal de ternera
al 2%). Los tubos se incubaron durante cuatro horas a 37ºC y a
continuación se tiñeron con
fluoresceína-anti-CD45 (para
identificar leucocitos) (BD, número de catálogo 555482) y
ficoeritrina-anti-CD19 (para
identificar células B) (BD, número de catálogo 555413) durante 30
minutos a temperatura ambiente. Los glóbulos rojos se lisaron por
la adición de BD PharmLyse, (BD, número de catálogo 555899), se
lavaron las muestras y se resuspendieron en tampón FACS para el
análisis en un citómetro de flujo Becton Dickinson FACSort.
Inmediatamente antes de análisis, se añadió yoduro de propidio (PI),
concentración final 0,1 \mug/ml, a las muestras para discriminar
entre células vivas y muertas. Los controles incluyeron células que
se habían incubado con tampón de FACS solo, muestras no teñidas y
muestras teñidas con un único color. Cada muestra se realizó por
triplicado y se recogieron 10.000 acontecimientos negativos para PI
dentro de la región de dispersión frontal/lateral (FSCSSC) de
linfocitos. Los datos se analizaron usando el programa WinMDI. Para
el análisis, se identificaron cinco linfocitos en base a las
características de tinción positiva con CD45, negatividad para PI y
FSC/SSC. En cada muestra se identificó el porcentaje de células CD
19+ con estas características. Los datos se expresaron como % de la
media de células CD19+ más/menos 1 desviación estándar. Como
alternativa, para facilitar la comparación entre donadores, los
datos se expresaron como % de células CD19+ iniciales restantes es
decir (linfocitos CD 19+ restantes tras el tratamiento
%)/(linfocitos CD19+ en la muestra tratada con tampón FACS %) x
100.
Los datos de depleción de células B
representativos demuestran que la variante I332E depleciona las
células B con más potencia y en mayor medida que Rituxan en una
muestra de sangre entera que contiene el genotipo VV (de la alta
afinidad) del receptor Fc\gammaRIIIa.
Los datos de depleción de células B
representativos demuestran que la variante I332E depleciona las
células B con más potencia y en mayor medida que Rituxan en una
muestra de sangre entera que contiene el genotipo FF (de la alta
afinidad) del receptor Fc\gammaRIIIa. Se obtienen resultados
similares cuando se realiza el ensayo con sangre entera que exhibe
el genotipo VF (heterocigota) para el receptor de Fc\gammaRIIIa o
con los genotipos HH, HR, o RR del receptor Fc\gammaRIIa (Tabla
3).
La figura 14 muestra los datos representativos
de depleción de células B que demuestran que la variante A378D
inesperadamente depleciona las células B de manera más potente y en
mayor medida que las variantes con actividad igual o superior en
los ensayos de ADCC y CDC in vitro.
Estos ejemplos describen cómo se determinó la
afinidad (Kd) de la interacción entre Fc\gammaRIIa (genotipo FF)
y Fc de tipo natural, u original, y la variante I332E.
El dominio extracelular soluble de
Fc\gammaRIIla (158F) humano se expresó en células 293 y se
purificó por unión a su etiqueta de 6 histidina fabricada en resina
Ni-NTA.
Se acopló un tubo de perlas de azlactona
(Sapidyne) con 1 mg de Fc\gammaRIII (158F) en tampón de
bicarbonato de sodio de pH 9,3. La suspensión se centrifugó durante
la noche a 4ºC, se lavó dos veces con PBS y se bloqueó usando
tampón de bloqueo (tris 1M pH 7,4 + BSA al 1%) durante 1 hora a
temperatura ambiente. A continuación se lavaron las perlas tres
veces con PBS y se resuspendieron en 50 ml de PBS con azida al
0,01%. Se prepararon doce equilibradores, todos conteniendo IgG 7,5
nM y Fc\gammaRIII valorado desde 4 \muM hasta 1,95 nM en tampón
de reacción (PBS pH 7,4, BSA al 0,1, azida al 01%) y se dejó
equilibrar durante 16 horas a temperatura ambiente. Todos los
experimentos se realizaron en tampón de reacción a temperatura
ambiente con caudales de 0,5 ml/min. Tras empaquetar las perlas de
Fc\gammaRIII en la celda de flujo del instrumento, se capturó IgG
libre del primer equilibrador. A continuación se lavaron las perlas
y se unieron. La IgG se detectó usando (Fab')2
anti-Fc humana de cabra conjugado a FITC (Jackson
Immunochemicals). El proceso se repitió a continuación para los
restantes 11 equilibradores y se determinó la Kd tras el análisis
con el programa Kinexa Pro. Usando este enfoque, se determinó que
la afinidad (Kd) de la interacción entre Fc\gammaRIIIa (genotipo
FF) y Fc de tipo natural, u original era de 387 nM mientras que la
afinidad de la variante I332E era de 52 nM. El anticuerpo
glicosilado (GnTIII) exhibió una Kd de 83 NM mientras que una
variante combinatoria (L256P, I332E) exhibió una Kd de 21 nM.
Este ejemplo describe cómo se determinó la
actividad de CDC de diversas variantes de la región Fc
Este ensayo se llevó a cabo usando complemento
humano (Quidel Corp., número de catálogo A113) en células Ramos (RA
Nº 1) (ATCC número de catálogo CRL-1596). Las
células Ramos se cultivaron en medio RPMI1640 de Gibco que contenía
FBS al 10%, a 37ºC y CO_{2} al 5%. El día antes del ensayo, se
sembraron las células a razón de 1 x 10^{6} células en un matraz
T175. Al día siguiente, se resuspendieron las células hasta 3,57 x
10^{5} células/ml en RPMI1640 sin rojo de fenol que contenía FBS
al 1%. Se distribuyeron 70 \mul de células por pocillo a una
placa de fondo plano Costar 3917. Para la curva de valoración, se
preparó IgG variante en una dilución en serie de 3 veces en medio
RPMI1640. Para el ensayo de selección de la biblioteca de único
punto, se normalizó la variante de IgG expresada transitoriamente
en el sobrenadante de cultivo hasta 1 \mug/ml en medio simulado.
Se añadieron treinta microlitros de IgG variante (es decir 200 ng/ml
de concentración final) y 50 \mul de complemento humano (Quidel
Corp número de catálogo AI13) diluido 1:5 en RPMI1640 + FBS al 1% a
la célula diana y se mezcló bien pipeteando suavemente. Las placas
se incubaron a 37ºC en presencia de CO_{2} al 5% durante 1,5
horas. Tras la adición de 15 \mul/pocillo de Azul Alamar (Serotec,
número de catálogo BUF012B) se siguió la incubación durante la
noche. La mañana siguiente, se midió la señal de fluorescencia por
medio de un lector multietiqueta EnVision 2100 de PerkinElmer con
excitación a 560 nm y emisión a 590 nm.
Todos los ensayos de punto único se realizaron
dos veces. Cada placa de ensayo contenía controles para la lisis
espontánea de células diana por el complemento humano en ausencia de
IgG y lisis máxima de células diana en presencia de Tritón
X-100 al 1%. En cada placa se incluyeron tres
controles de tipo natural y se promediaron las señales del ensayo
de CDC. El valor de fondo, obtenido de los controles de lisis
espontánea, se restó de cada muestra. Los datos se convirtieron de
señales de fluorescencia a porcentaje de lisis específica basada en
los controles de lisis espontánea y máxima. El porcentaje de lisis
específica se calculó a partir de la siguiente ecuación: porcentaje
de lisis específica = (señal de fluorescencia
experimental-señal espontánea)/(señal de lisis
máxima-señal espontánea) X 100. A continuación se
calculó el porcentaje de actividad de la variante de Fc sobre el
promedio de tres controles de tipo natural. Se promediaron los
porcentajes de actividad sobre el tipo natural para placas de
ensayo por duplicado y se calculó la desviación estándar entre
placas de ensayo individuales.
\newpage
En este experimento, se lisaron las células
Ramos usando variantes de la región Fc de IgG de aminoácido único y
de doble aminoácido y el complemento humano. La placa de ensayo se
incubó a 37ºC en presencia de CO_{2} al 5% durante 1,5 horas,
seguido por la adición de 15 \mul de azul Alamar y la incubación
durante la noche. Se midió la señal de fluorescencia y se graficó
frente a las concentraciones de IgG. Estos datos revelan que,
comparado con el anticuerpo anti-CD20 de tipo
natural las actividades de CDC mejoraron ligeramente en los casos
de las variantes de aminoácido único I332D, I332E, y mejoraron
significativamente en los casos de T256P y S440Y y la combinación
de T256P con I332E. En el caso de la variante A378D, la actividad de
CDC disminuyó (Tabla 2).
Este Ejemplo describe los ensayos para la unión
del receptor neonatal de Fc (FcRn) a la IgG variante. Se recubrió
una placa de ELISA de fondo en U de 96 pocillos (Costar) con 50
\mul/pocillo de Neutravidina 2 \mug/ml (Pierce Biotechnology,
número de catálogo 31000) en tampón de carbonato 50 mM (pH 9,3) a
4ºC durante la noche. Se eliminó la Neutravidina no unida y se lavó
la placa tres veces con PBST (PBS que contenía Tween 20 al 0,1%).
Se aplicaron 50 \mul/pocillo de FcRN soluble marcado con biotina a
2,5 \mug/ml en PBS y se incubó a temperatura ambiente durante 1
hora. A continuación se añadieron 75 \mul de tampón de bloqueo de
caseína (Pierce Biotechnology, número de catálogo 37528) a la placa
durante 1 hora. A continuación se lavó la placa de ELISA lavada con
PBST y se incubó con 50 \mul/pocillo de IgG variante. Para la
curva de valoración, se preparó IgG variante por medio de una
dilución en serie 3 veces en tampón de unión de FcRn (NaPO_{4}100
nM, Tween-20 al 0,05%) a diferentes pH desde 6,0
hasta 7,4. Para la selección de punto único, se normalizó la IgG
variante expresada de manera transitoria en el sobrenadante de
cultivo hasta una concentración final de 50 ng/ml (200 ng/ml para
unión a pH 7,4) y se ajustó el pH con tampón de unión de FcRn hasta
6,0. En las siguientes etapas, se usó tampón de unión FcRn al pH
correspondientemente para lavar la placa y diluir los reactivos. La
reacción de unión se llevó a cabo a temperatura ambiente durante 1
hora. Tras tres lavados, se detectó la IgG unida por medio de
(Fab')2 anti-Fab-humana de cabra
conjugado a HRP durante 1 hora. La actividad de HRP se desarrolló
en el sustrato de HRP de Pierce (Turbo TMB-ELISA,
número de catálogo 34022) durante 5-30 minutos. La
reacción se detuvo por la adición de 50 \mul de H_{2}SO_{4} 2
M y se leyó la absorbancia a 450 nm con un lector de microplacas
VMAX (Molecular Devices).
Los estudios in vitro y los modelos de
tumores murinos (Clynes RA, y col. Nat Med. 6: 443 (2000))
proporcionan pruebas de que la ADCC desempeña una función en los
efectos antitumorales de los anticuerpos anti-CD20,
tales como RITUXAN. Los pacientes humanos pueden tratarse con
anticuerpos variantes de
anti-CD20-I332E (Figuras 15 y 16),
o RITUXAN, de manera similar a la divulgada en Cartron y col., Blood
99: 754 (2002). Por ejemplo, los pacientes que se presentan con
enfermedad en estadio II a IV según la clasificación de Ann Arbor,
que tienen al menos un sitio de enfermedad que puede medirse, y
baja carga tumoral según los criterios de GELF, podrían tratarse
con un total de cuatro dosis de aproximadamente 375 mg/m^{2} de
una variante de Fc anti-CD20-I332E o
con RITUXAN administrado por infusión intravenosa (días 1, 8,15 y
22). La variable de eficacia primaria es la tasa de respuesta
objetiva, es decir, la proporción de pacientes que alcanzan la
remisión completa (CR), la CR no confirmada (Cru), o la respuesta
parcial (PR) según los criterios propuestos recientemente por un
comité de expertos internacional. La respuesta clínica puede
evaluarse en el mes dos (M2). También puede evaluarse la progresión
de los pacientes en 1 año (M12).
Las tasas de respuesta objetiva en M2 y M12 para
los pacientes tratados con RITUXAN o con
anti-CD20-I332E pueden compararse
de manera que puedan cuantificarse las actividades de ADCC mejoradas
proporcionadas por las variantes I332E. Este mismo ejemplo podría
repetirse con otras variantes anti-CD20 (por ejemplo
I332D, P247L A330K, A339T, A378D, o combinaciones según se muestra
en la Tabla 1).
Además, la potencia aumentada de las variantes
puede permitir diferentes vías de administración, inyecciones menos
frecuentes, y/o administración de dosis más pequeñas.
Aunque la invención se ha descrito con respecto
a formas de realización específicas de preferencia, debe entenderse
que la invención según se reivindica no debe limitarse indebidamente
a tales formas de realización específicas. De hecho, se consideran
diversas modificaciones de los modos descritos para llevar a cabo la
invención que son obvias para los expertos en química y biología
molecular o campos relacionados.
<110> Applied Molecular Evolution
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Variantes de la región Fc
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> x-16757
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> 60/535.764
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
12-01-2004
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> PatentIn version 3.3
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 217
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
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<211> 215
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Murino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Murino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212>PRT
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<213> Murino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 218
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Murino
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 110
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 107
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 330
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 330
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\hskip1cm
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Humano
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 990
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 93
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 90
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> HUMANO
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
Claims (13)
1. Un anticuerpo que comprende una variante de
una región Fc humana original, o una de sus porciones que comprende
la variante, en el que la variante comprende una sustitución de
aminoácidos de una prolina por una leucina, histidina o isoleucina
en una posición correspondiente a la prolina de la posición 247 de
la secuencia de Fc humana según el formato del índice de EU de
Kabat.
2. El anticuerpo de la reivindicación 1, en el
que la región Fc original es una IgG.
3. El anticuerpo de la reivindicación 1 ó 2, en
el que la región Fc original es una subclase seleccionada del grupo
constituido por IgG1, IgG2, IgG3 e IgG4.
4. El anticuerpo de una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en el que la región Fc humana original
comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo
constituido por SEC ID Nº: 1-4 y SEC ID Nº:
9-12.
5. El anticuerpo de la reivindicación 1, en el
que la variante comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada
del grupo constituido por SEC ID Nº: 13, SEC ID Nº: 14 y SEC ID Nº:
15.
6. El anticuerpo de la reivindicación 1, en el
que la variante comprende una secuencia de aminoácidos según SEC ID
Nº: 14.
7. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el anticuerpo es un
anticuerpo monoclonal.
8. El anticuerpo monoclonal de la reivindicación
7, en el que el anticuerpo monoclonal comprende dos polipéptidos de
cadenas pesadas idénticos y dos polipéptidos de cadenas ligeras
idénticos.
9. El anticuerpo de cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el anticuerpo se une
específicamente a CD20 humana.
10. Una composición farmacéutica que comprende
el anticuerpo de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9.
11. Un anticuerpo según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 9 para uso en terapia.
12. Una secuencia de ácido nucleico que codifica
una variante de la región Fc, en la que dicha secuencia de ácido
nucleico comprende una secuencia seleccionada del grupo constituido
por SEC ID Nº: 38, SEC ID Nº: 39 y SEC ID Nº: 40.
13. Una célula huésped aislada que comprende un
vector, en la que dicho vector comprende una secuencia de ácido
nucleico que codifica una variante de la región Fc, en la que dicha
secuencia de ácido nucleico comprende una secuencia seleccionada
del grupo constituido por SEC ID Nº: 38, SEC ID Nº: 39 y SEC ID Nº:
40.
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