DE202015009609U1 - Mikrofluidisches System zur Erzeugung von Emulsionen - Google Patents

Mikrofluidisches System zur Erzeugung von Emulsionen Download PDF

Info

Publication number
DE202015009609U1
DE202015009609U1 DE202015009609.3U DE202015009609U DE202015009609U1 DE 202015009609 U1 DE202015009609 U1 DE 202015009609U1 DE 202015009609 U DE202015009609 U DE 202015009609U DE 202015009609 U1 DE202015009609 U1 DE 202015009609U1
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
fluid
channel
microcapsules
droplets
microcapsule
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
DE202015009609.3U
Other languages
English (en)
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
10X Genomics Inc
Original Assignee
10X Genomics Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 10X Genomics Inc filed Critical 10X Genomics Inc
Publication of DE202015009609U1 publication Critical patent/DE202015009609U1/de
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502761Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip specially adapted for handling suspended solids or molecules independently from the bulk fluid flow, e.g. for trapping or sorting beads, for physically stretching molecules
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/02Burettes; Pipettes
    • B01L3/0241Drop counters; Drop formers
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip
    • B01L3/502769Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by multiphase flow arrangements
    • B01L3/502784Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip characterised by multiphase flow arrangements specially adapted for droplet or plug flow, e.g. digital microfluidics
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/08Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor using a stream of discrete samples flowing along a tube system, e.g. flow injection analysis
    • G01N35/085Flow Injection Analysis
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06Fluid handling related problems
    • B01L2200/0673Handling of plugs of fluid surrounded by immiscible fluid
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0809Geometry, shape and general structure rectangular shaped
    • B01L2300/0816Cards, e.g. flat sample carriers usually with flow in two horizontal directions
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00Moving or stopping fluids
    • B01L2400/04Moving fluids with specific forces or mechanical means
    • B01L2400/0475Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure
    • B01L2400/0487Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure fluid pressure, pneumatics
    • B01L2400/049Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure fluid pressure, pneumatics vacuum
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00Moving or stopping fluids
    • B01L2400/08Regulating or influencing the flow resistance
    • B01L2400/084Passive control of flow resistance
    • B01L2400/086Passive control of flow resistance using baffles or other fixed flow obstructions
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N2035/00178Special arrangements of analysers
    • G01N2035/00237Handling microquantities of analyte, e.g. microvalves, capillary networks
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N35/00Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
    • G01N35/10Devices for transferring samples or any liquids to, in, or from, the analysis apparatus, e.g. suction devices, injection devices
    • G01N2035/1027General features of the devices
    • G01N2035/1034Transferring microquantities of liquid

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Fluid Mechanics (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Physical Or Chemical Processes And Apparatus (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
  • Automatic Analysis And Handling Materials Therefor (AREA)
  • Micromachines (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Ein mikrofluidisches System, umfassend:
(a) ein mikrofluidisches Kanalnetzwerk umfassend mindestens ein erstes, zweites und drittes Kanalsegment in Fluidverbindung mit einem Tröpfchenerzeugungsknoten;
(b) eine erste Fluidquelle, die fluidisch mit dem ersten Kanalsegment verbunden ist und ein erstes Fluid umfasst, das ein wässriges Fluid umfasst, wobei das wässrige Fluid eine Vielzahl von darin disponierten Mikrokapseln umfasst;
(c) eine zweite Fluidquelle, die mit dem zweiten Kanalsegment fluidisch verbunden ist und ein zweites Fluid umfasst, das mit dem wässrigen Fluid nicht mischbar ist; und
(d) ein Stromkontrollsystem, das mit dem mikrofluidischen Kanalnetzwerk verbunden ist, das
(i) das erste Fluid und das zweite Fluid einem Strömen in den Tröpfchenerzeugungsknoten unterwirft, um Tröpfchen zu erzeugen, die Mikrokapseln umfassen, und
(ii) die Tröpfchen einem Strömen ins dritte Kanalsegment unterwirft, so dass mindestens 75% der Tröpfchen mindestens eine Mikrokapsel umfassen und weniger als 25% der Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel umfassen. wobei das mikrofluidische System weiterhin eine Mikrokapselstromregulierungskomponente umfasst, die eine Frequenz breitstellt, mit der die Mikrokapseln strömen, die einen Variationskoeffizienten von weniger als 50% aufweist.

Description

  • GEBIET DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung betrifft mikrofluidische Systeme zur Erzeugung von Emulsionen.
  • HINTERGRUND
  • Das Gebiet der Biowissenschaften hat in den letzten zwei Jahrzehnten dramatische Fortschritte gemacht. Von der breiten Kommerzialisierung von Produkten, die von der Technologie rekombinanter Desoxyribonukleinsäuren (DNA) abgeleitet sind, bis hin zur Vereinfachung der Forschung, Entwicklung und Diagnostik, die durch kritische Forschungsinstrumente ermöglicht wurden, wie die Polymerasekettenreaktion, Nukleinsäurematrixtechnologien, robuste Nukleinsäuresequenzierungstechnologien und, in jüngerer Zeit, die Entwicklung und Vermarktung von Sequenzierungstechnologien der nächsten Generation mit hoher Durchsatzrate. Alle diese Verbesserungen haben dazu beigetragen, die Felder der biologischen Forschung, Medizin, Diagnostik, landwirtschaftlichen Biotechnologie und unzähliger anderer verwandter Gebiete sprunghaft voranzubringen.
  • Keine dieser Technologien existiert allgemein in einem Vakuum, sondern ist in einen breiteren Arbeitsablauf integriert, der vorgelagerte Komponenten der Probengewinnung und -vorbereitung umfasst, sowie die nachfolgenden Komponenten der Datenerfassung, -dekonvolution, -interpretation und letztendlich -nutzung. Darüber hinaus neigte jeder dieser Fortschritte, obwohl er für seine Gebiete einen großen Schritt vorwärts bedeutet hat, dazu, kritische Engpässe in den Arbeitsabläufen aufzudecken, die sich selbst entwickeln müssen, um den Anforderungen des Gebiets zu entsprechen. Zum Beispiel wird die Genomsequenzierung an beiden Enden durch kritische Arbeitsablaufprobleme beschränkt, einschließlich, in vielen Fällen, komplexer und arbeitsintensiver Probenvorbereitungsprozesse, nur um die Sequenzierung von Nukleinsäuren aus Probenmaterialien beginnen zu können. Ähnlich gibt es, sobald Sequenzdaten erhalten wurden, ein komplexes nachgelagertes Informatikerfordernis, um die Sequenzdaten in Basenfeststellungen zu dekonvolvieren und dann die bestimmten Basensequenzen zu zusammenhängenden Sequenzdaten zusammenzusetzen, und letztendlich diese Sequenzdaten mit ganzen Genome für einen gegebenen Organismus abzugleichen.
  • Ein kritischer Engpass für viele dieser Technologien liegt nicht in ihrer Fähigkeit, massive Datenmengen zu erzeugen, sondern in der Fähigkeit, jene Daten spezifischer einem Teil einer komplexen Probe oder einer bestimmten Probe unter vielen Multiplex-Proben zuzuordnen.
  • BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
  • Die Erfindung ist in den unabhängigen Ansprüchen definiert. Im Folgenden werden die Teile der Beschreibung und Zeichnungen, die sich auf Ausführungsformen beziehen, die nicht durch die Ansprüche abgedeckt sind, nicht als Ausführungsformen der Erfindung dargestellt, sondern als Beispiele, die zum Verständnis der Erfindung nützlich sind.
  • Vorrichtungen, Verfahren und Systeme der vorliegenden Offenbarung stellen Lösungen für Herausforderungen auf verschiedenen Gebieten bereit, einschließlich der oben beschriebenen Herausforderungen. Die vorliegende Offenbarung stellt Vorrichtungen, Systeme und Verfahren für die Erzeugung von eingekapselten Reagenzien sowie multiplexierten Partitionen bereit, die diese eingekapselten Reagenzien zur Verwendung in einer Vielzahl von Anwendungen enthalten.
  • Die Vorrichtungen, Systeme und Verfahren der vorliegenden Offenbarung verwenden mikrofluidische Systeme bei der Erzeugung von monodispersen Populationen von Mikrokapseln oder Kügelchen, die Reagenzien, wie damit assoziierte biologische Reagenzien, aufweisen können. Auch bereitgestellt werden Vorrichtungen, Systeme und Verfahren zum selektiven und kontrollierbaren Partitionieren dieser Mikrokapseln oder Kügelchen in Tröpfchen in Emulsionen zur Verwendung bei der Durchführung weiterer Reaktionen und/oder Analysen. Auch bereitgestellt werden die verschiedenen Bestandteile der Vorrichtungen und Systeme sowie Schnittstellenkomponenten zur Erleichterung der Interaktion zwischen solchen Komponenten.
  • Ein beispielhafter Aspekt der Offenbarung stellt ein Verfahren zum Partitionieren von Mikrokapseln bereit. Das Verfahren kann das Bereitstellen eines wässrigen Fluids umfassen, das eine Suspension von Mikrokapseln umfasst, und Einströmen des wässrige Fluid in einen Tröpfchenerzeugungsknoten umfassend ein Trennfluid, um eine Population von Tröpfchen des wässrigen Fluids in dem Trennfluid zu bilden. Die Flussrate des wässrigen Fluids kann so sein, dass nicht mehr als 50% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen durch eine Mikrokapsel aus der Suspension von Mikrokapseln unbesetzt sind.
  • In manchen Ausführungsformen ist die Flussrate derart, dass nicht mehr als 25% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen von einer Mikrokapsel unbesetzt sind. In manchen Ausführungsformen ist die Flussrate derart, dass nicht mehr als 10% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen durch eine Mikrokapsel unbesetzt sind. In einigen Ausführungsformen ist die Flussrate derart, dass nicht mehr als 50%, 45%, 40%, 35%, 30%, 25%, 20%, 15%, 10%, 5%, 2% oder 1% der Population von Tröpfchen von einer Mikrokapsel unbesetzt sind.
  • In einigen Ausführungsformen umfassen weniger als 25% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen weniger als 20% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen weniger als 15% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen weniger als 10% der Tröpfchen der Tröpfchenpopulation mehr als eine Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen weniger als 5% der Tröpfchen der Tröpfchenpopulation mehr als eine Mikrokapsel.
  • In einigen Ausführungsformen umfassen mindestens 80% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen eine einzige Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen mindestens 90% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen eine einzige Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen mindestens 95% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen eine einzige Mikrokapsel. In einigen Ausführungsformen umfassen mindestens 70%, 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 98% oder 99% Tröpfchen der Tröpfchenpopulation eine einzige Mikrokapsel.
  • In einigen Ausführungsformen kann der Tröpfchenerzeugungsknoten in einem mikrofluidischen Kanalnetzwerk einer mikrofluidischen Vorrichtung sein. In einigen Ausführungsformen kann das mikrofluidische Kanalnetzwerk ein erstes Kanalsegment umfassen, das eine Quelle von Mikrokapseln mit dem Tröpfchenerzeugungsknoten fluidisch verbindet. Das mikrofluidische Kanalnetzwerk kann auch ein zweites Kanalsegment umfassen, das eine Quelle für Trennfluid mit dem Tröpfchenerzeugungsknoten verbindet, und ein drittes Kanalsegment, das fluidisch mit dem Tröpfchenerzeugungsknoten verbunden ist und einen Auslass für den Tröpfchenerzeugungsknoten bereitstellt.
  • In einigen Ausführungsformen kann die Flussrate durch Bereitstellen eines oder mehr Druckunterschiede über die ersten und zweiten Kanalsegmente bereitgestellt werden. In manchen Ausführungsformen können das erste und/oder zweite Kanalsegment Querschnittsdimensionen aufweisen, die die Strömungsrate so bereitstellen, dass nicht mehr als 50% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen von einer Mikrokapsel aus der Suspension von Mikrokapseln unbesetzt sind. In einigen Ausführungsformen kann das mikrofluidische Kanalnetzwerk ferner eine oder mehr Flusskontrollstrukturen innerhalb des ersten Kanalsegments umfassen, die die Flussrate bereitstellen.
  • In einigen Ausführungsformen haben die Mikrokapseln der Suspension von Mikrokapseln eine mittlere Querschnittsdimension und einen Variationskoeffizienten der Querschnittsdimension von nicht mehr als 10%. In einigen Ausführungsformen haben die Mikrokapseln der Suspension von Mikrokapseln eine mittlere Querschnittsdimension und einen Variationskoeffizienten der Querschnittsdimension von nicht mehr als 10%, 8%, 6%, 4%, 2% oder 1%.
  • Ein zusätzlicher Aspekt der Offenbarung stellt ein beispielhaftes Verfahren zum Partitionieren von Mikrokapseln bereit. Das Verfahren kann das Strömen eines wässrigen Fluids umfassend eine Suspension von Mikrokapseln in einen Tröpfchenerzeugungsknoten umfassend ein Trennfluid umfassen. Während eines Fensters der Tröpfchenerzeugung können die Mikrokapseln mit einer Frequenz, die weniger als 30% variiert, in den Tröpfchenerzeugungsknoten strömen. Das Verfahren kann auch das Partitionieren der Mikrokapseln im Trennfluid während des Fensters der Tröpfchenerzeugung umfassen. In einigen Ausführungsformen ist die Frequenz größer als 50 Hz. In einigen Ausführungsformen ist die Frequenz größer als 500 Hz. In einigen Ausführungsformen ist die Frequenz größer als 1000 Hz. In einigen Ausführungsformen ist die Frequenz größer als 50 Hz, 100 Hz, 250 Hz, 500 Hz, 750 Hz, 1000 Hz, 1250 Hz, 1500 Hz, 1750 Hz oder 2000 Hz.
  • In einigen Ausführungsformen strömen die Mikrokapseln während des Fensters der Tröpfchenerzeugung mit einer Frequenz in den Tröpfchenerzeugungsknoten, die weniger als 20% variiert. In einigen Ausführungsformen fließen die Mikrokapseln während des Fensters der Tröpfchenerzeugung mit einer Frequenz in den Tröpfchenerzeugungsknoten, die weniger als 10% variiert. In einigen Ausführungsformen fließen die Mikrokapseln während des Fensters der Tröpfchenerzeugung mit einer Frequenz in den Tröpfchenerzeugungsknoten, die weniger als 5% variiert. In einigen Ausführungsformen fließen die Mikrokapseln während des Fensters der Tröpfchenerzeugung mit einer Frequenz in den Tröpfchenerzeugungsknoten, die weniger als 30%, 25%, 20%, 15%, 10%, 5%, 2% oder 1% variiert.
  • In einigen Ausführungsformen kann das Strömen des wässrigen Fluids umfassend die Suspension von Mikrokapseln in dem Tröpfchenerzeugungsknoten umfassend ein Trennfluid das Strömen des wässrigen Fluids durch einen mikrofluidischen Kanal umfassen, der fluidisch mit dem Tröpfchenerzeugungsknoten verbunden ist. Der mikrofluidische Kanal kann eine Region umfassen, die den Fluss (z. B. Flussrate) der Mikrokapseln reguliert.
  • Ein zusätzlicher Aspekt der Offenbarung stellt ein beispielhaftes Verfahren zur Herstellung von Mikrokapseln bereit. Das Verfahren kann Bereitstellen eines Gelvorläufers in einem wässrigen Fluid und das Strömen des wässrigen Fluids mit dem Gelvorläufer durch eine Fluidleitung, die fluidisch mit einem Tröpfchenerzeugungsknoten umfassend ein Trennfluid verbunden ist, umfassen. Das Trennfluid kann ein Gelaktivierungsagens umfassen. Das Verfahren kann auch Bilden von Tröpfchen des wässrigen Fluids im Trennfluid umfassen, wo innerhalb der Tröpfchen das Gelaktivierungsagens den Gelvorläufer kontaktiert, um Gelmikrokapseln zu bilden. In einigen Ausführungsformen kann das wässrige Fluid auch ein biologisches Molekül umfassen, wobei beispielsweise das biologische Molekül in den Gelmikrokapseln mitgezogen werden kann.
  • Ein zusätzlicher Aspekt der Offenbarung stellt ein beispielhaftes Verfahren zum Partitionieren von Mikrokapseln bereit. Das Verfahren kann das Strömen eines wässrigen Fluids umfassend eine Suspension einer monodispersen Population von Mikrokapseln in einen Tröpfchenerzeugungsknoten umfassen. Die monodisperse Population kann eine mittlere Querschnittsdimension und einen Variationskoeffizienten der Querschnittsdimension von nicht mehr als 10% aufweisen. Das Verfahren kann auch Einführen eines Trennfluids in den Tröpfchenerzeugungsknoten und Trennen des wässrigen Fluids in Tröpfchen innerhalb des Trennfluids umfassen, wobei die Tröpfchen eine oder mehr Mikrokapseln enthalten.
  • Ein zusätzlicher Aspekt der Offenbarung stellt ein mikrofluidisches System bereit. Das mikrofluidische System kann ein mikrofluidisches Kanalnetzwerk umfassen, das mindestens ein erstes, ein zweites und ein drittes Kanalsegment in Fluidverbindung mit einem Tröpfchenerzeugungsknoten umfasst. Das erste Kanalsegment kann fluidisch mit einer ersten Fluidquelle verbunden sein, die ein erstes Fluid umfasst, das ein wässriges Fluid umfasst. Das wässrige Fluid kann eine Vielzahl von darin angeordneten Mikrokapseln umfassen. Des Weiteren kann das zweite Kanalsegment fluidisch mit einer zweiten Fluidquelle verbunden sein, die ein zweites Fluid umfasst, das mit dem wässrigen Fluid nicht mischbar ist. Das mikrofluidische System kann auch ein mit dem mikrofluidischen Kanalsystem verbundenes Flusskontrollsystem umfassen. Das Flusskontrollsystem kann das erste Fluid und das zweite Fluid in den Tröpfchenerzeugungsknoten fließen lassen, um Tröpfchen zu erzeugen, die Mikrokapseln umfassen; und kann die Tröpfchen in das dritte Kanalsegment strömen lassen, so dass mindestens 75% der Tröpfchen mindestens eine Mikrokapsel und weniger als 25% der Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel umfassen.
  • Ein zusätzlicher Aspekt der Offenbarung stellt ein mikrofluidisches System bereit. Das mikrofluidische System kann ein mikrofluidisches Kanalnetzwerk umfassen. Das mikrofluidische Kanalnetzwerk kann ein erstes Kanalsegment, das an eine Quelle eines ersten wässrigen Fluids gekoppelt ist, das eine Suspension von Mikrokapseln umfasst; mindestens ein zweites Kanalsegment, das an eine Quelle eines zweiten wässrigen Fluids gekoppelt ist, wobei das erste und zweite Kanalsegment in Fluidverbindung an einem ersten Knoten stehen, der das erste wässrige Fluid mit dem zweiten wässrigen Fluid in Kontakt bringt; und ein drittes Kanalsegment, das mit dem ersten Knoten gekoppelt ist und mindestens ein viertes Kanalsegment an einem zweiten Knoten schneidet, umfassen. Das mindestens eine vierte Kanalsegment kann an eine Quelle eines Fluids gekoppelt sein, das mit dem ersten und zweiten wässrigen Fluid nicht mischbar ist. Darüber hinaus kann der zweite Knoten das erste und zweite wässrige Fluid in Tröpfchen innerhalb des Fluids partitionieren. Das mikrofluidische System kann auch ein Flusskontrollsystem umfassen, das operabel mit dem mikrofluidischen Kanalnetzwerk gekoppelt ist. Das Flusskontrollsystem kann das erste, zweite und dritte Fluid durch das mikrofluidische Kanalnetzwerk fließen lassen, um Tröpfchen zu bilden, die das erste und zweite wässrige Fluid in dem Fluid umfassen, mit einer Frequenz von mindestens 50 Hz und die weniger als 20% variiert.
  • Weitere Aspekte und Vorteile der vorliegenden Offenbarung werden für den Fachmann aus der folgenden ausführlichen Beschreibung, in der nur veranschaulichende Ausführungsformen der vorliegenden Offenbarung gezeigt und beschrieben sind, leicht ersichtlich werden. Wie zu erkennen ist, ist die vorliegende Offenbarung in der Lage, andere und verschiedene Ausführungsformen zu verwenden, und ihre verschiedenen Details sind in verschiedenen offensichtlichen Aspekten Modifikationen zugänglich, all dies ohne von der Offenbarung abzuweichen. Dementsprechend sind die Zeichnungen und die Beschreibung als veranschaulichender und nicht als einschränkender Natur anzusehen.
  • Figurenliste
    • Fig. 1A, Fig. 1B und 1C stellen schematische Darstellungen von beispielhaften partitions- oder tröpfchenerzeugenden fluidischen Kanalknoten dar.
    • 2 veranschaulicht schematisch eine einfache, beispielhafte fluidische Kanalarchitektur zur Partitionierung von Mikrokapseln und anderer Fluide in Tröpfchen in einer Wasser-in-Öl-Emulsion.
    • Fig. 3A und 3B veranschaulichen schematisch eine beispielhafte fluidische Kanalarchitektur zur Partitionierung eingekapselter Reagenzien in Tröpfchen in einer Emulsion.
    • 4 veranschaulicht schematisch ein beispielhaftes Kanalnetzwerk und mikrofluidische Vorrichtung, die in der Partitionierung eingekapselter Reagenzien nützlich sind.
    • 5 veranschaulicht schematisch eine Seitenansicht einer beispielhaften Speicherstruktur zur Verbesserung der Manipulation von Mikrokapselzusammensetzungen innerhalb fluidischer Systeme.
    • Fig. 6A und 6B veranschaulichen eine beispielhafte Mikrokapselflussregulierende Struktur.
    • Fig. 7A und 7B veranschaulichen schematisch ein Beispiel von wechselwirkenden fluidenthaltenden Gefäßen mit einem Fluidspeicher auf einer Vorrichtung.
  • AUSFÜHRLICHE BESCHREIBUNG
  • Allgemein
  • Die vorliegende Offenbarung stellt Vorrichtungen, Systeme und Verfahren bereit, die besonders nützlich sind, um komplexe Proben zur Analyse unter Verwendung von Hochdurchsatz-Analysesystemen zu handhaben, einschließlich zum Beispiel Hochdurchsatz-Nukleinsäureanalysesysteme wie Nukleinsäurearrays, Nukleinsäuresequenziersysteme, Nukleinsäureamplifikations- und - quantifizierungssysteme oder dergleichen. Insbesondere sind die hierin beschriebenen Vorrichtungen, Systeme und Verfahren besonders nützlich, um eingekapselte Reagenzien oder Reagenzsysteme bereitzustellen und diese Reagenzien mit Probenkomponenten für die weitere Reaktion und/oder Analyse zu kopartitionieren. Diese Kopartitionierung von Reagenzien und Probenkomponenten kann zum Beispiel zur Verringerung der Komplexität des Probenmaterials durch Trennen von Teilen der Probe in verschiedene Partitionen verwendet werden. Des Weiteren kann man, indem man auch Reagenzien trennt, jeden Probenportion einer anderen Reaktion unterziehen, einschließlich zum Beispiel der Anbringung von einzigartigen Identifikatoren an verschiedenen Probenkomponenten, z. B. Befestigung eines diskreten Strichcodes oder Markierungsreagenzes an den diskreten Probenkomponenten.
  • Besonders elegante Beispiele dieser Kopartitionierungsansätze sind in veröffentlichter internationaler Patentanmeldung Nr. WO2014/028537 und U.S.-Patentanmeldungen Nrn. 14/104,650 (eingereicht 12. Dezember 2013), 14/175,935 (eingereicht 7. Februar 2014), 14/175,973 (eingereicht 7. Februar 2014) und 61/937,344 (eingereicht 7. Februar 2014) beschrieben.
  • Beispielsweise stellt ein besonders eleganter Ansatz eine Polymermikrokapselzusammensetzung bereit, die an die Mikrokapsel gebundene Nukleinsäure-Strichcodesequenzen enthält, wobei die mit einer gegebenen Mikrokapsel assoziierten Strichcodes im Wesentlichen die gleiche Sequenz von Nukleotiden aufweisen, aber wobei unterschiedliche diskrete Mikrokapseln unterschiedliche mit solchen Mikrokapseln assoziierte Strichcodesequenzen haben. Jede dieser Mikrokapseln wird dann mit einem Teil eines Probenfluids in Kontakt gebracht, wie mit einem Probenfluid, das eine Template-Nukleinsäure aus einem Probenmaterial enthält. Die Mischung aus Probenmaterial einschließlich der Template-Nukleinsäure und der Mikrokapsel wird dann in ein kleines Volumen, wie ein Tröpfchen in einer Wasser-in-Öl-Emulsion, partitioniert, so dass die Mikrokapsel und ein Teil des Probenmaterials innerhalb desselben Tröpfchens enthalten sind. Zusätzlich zum Kontrollieren des Tröpfchenerzeugungsprozesses, um eine gewünschte Anzahl von Mikrokapseln in einer gegebenen Partition bereitzustellen, können das Probenmaterial und das Emulsionsverfahren auch kontrolliert werden, um eine gewünschte Menge an Probenmaterial, z. B. Proben-Nukleinsäurematerial, innerhalb jeder Unterteilung zu bereitzustellen, z. B. ein einziges Template-Molekül oder ein gewünschtes Niveau der Genomabdeckung innerhalb einer gegebenen Partition oder eine anderes gewünschtes Niveau an Probenmaterialien.
  • Innerhalb der Partition wird die Strichcodesequenz mit dem Probenmaterial, z. B. der Template-Nukleinsäure, umgesetzt, um das Probenmaterial oder einen Teil davon wirksam zu markieren. Zum Beispiel kann man durch Umsetzen der Strichcodesequenz mit dem Template, z. B. durch Amplifikation der Template-Sequenz unter Verwendung der Strichcodesequenz als Extensionsprimer, kann man die Strichcodesequenz effektiv an dem replizierten oder amplifizierte Template „befestigen“. Ähnlich erzeugt die Replikation des erweiterten Primers ein Komplement des Templates zusammen mit einem Komplement des Strichcodes, wodurch wiederum der Strichcode an der Vorlage befestigt wird. Das Vorhandensein oder die Befestigung der Strichcodesequenz oder ihres Komplementes an dem amplifizierten Template-Molekül oder seinem Komplement ermöglicht dann ein gewisses Maß an Zuweisung von Sequenzauslesungen, die diesen Strichcode für den gleichen Teil des Probenmaterials enthalten, z. B. dasselbe Template-Molekül oder die gleichen Probenkomponenten, die ursprünglich dieser Partition zugeordnet waren.
  • In vielen Fällen kann das Molekül, das die Strichcodesequenz oder -sequenzen umfasst, auch funktionelle Elemente umfassen, die bei der nachfolgenden Verarbeitung der amplifizierten Template-Sequenzen verwendet werden. Diese funktionellen Sequenzen umfassen zum Beispiel Primersequenzen (z. B. zielgerichtet oder universell), Primererkennungssequenzen, Sequenzen, die Sekundärstrukturen entweder innerhalb der Sequenz oder nach der Replikation der Sequenz bilden können, Anreicherungssequenzen, die z. B. als Affinitätsreinigungssequenzen verwendet werden, Immobilisierungssequenzen, Sondensequenzen, reverse complement- oder Haarnadelsequenzen oder einer Vielzahl von anderen funktionellen Sequenzen.
  • Es gibt eine Vielzahl von anderen hochwertigen Anwendungen für solche Partitionierungs- und Strichcodierungs- oder Markierungsprozesse. Die vorliegende Offenbarung stellt vorteilhafterweise Vorrichtungen, Systeme und Verfahren bereit, die die Erzeugung solcher partitionierter Zusammensetzungen oder von Komponenten davon erheblich erleichtern können.
  • II. Fluidisch Systeme zur Herstellung von eingekapselten Reagenzien und partitionierten Reaktionen
  • Die vorliegende Offenbarung stellt verbesserte fluidische Systeme und insbesondere verbesserte mikrofluidische Systeme bereit, die sowohl für die Erzeugung von eingekapselten Reagenzien als auch für die Partitionierung jener eingekapselten Reagenzien zur Verwendung in nachfolgenden Reaktionen und/oder Analysen nützlich sind. Wie hierin verwendet, bezeichnen mikrofluidische Systeme typischerweise fluidische Systeme, die eine oder mehr Fluidleitungen, -kanäle,-Kammern oder dergleichen verwenden, die eine oder mehr innere Querschnittsdimensionen, z. B. Tiefe, Länge oder Breite, aufweisen, die weniger als 1000 Mikrometer, weniger als 200 Mikrometer, weniger als 100 Mikrometer und in manchen Fällen weniger als etwa 50 Mikrometer oder sogar weniger als etwa 20 Mikrometer betragen. In manchen Fällen können nur eine oder mehr Querschnittsdimensionen etwa 20 Mikrometer oder weniger oder 10 Mikrometer oder weniger betragen. Typischerweise haben diese mikrofluidischen Kanäle oder Kammern mindestens eine Querschnittsdimension von zwischen etwa 1 und etwa 100 Mikrometern.
  • Wie zu erkennen ist, soll die Bezugnahme auf eingekapselte Reagenzien nicht den Umfang solcher Reagenzien auf vollständig eingeschlossene Kapseln beschränken, sondern soll jegliches einer Vielzahl von Verfahren zum Assoziieren von Reagenzien mit einem gegebenen Teilchen, Kügelchen oder einer anderen festen oder halbfesten Teilchenphase widerspiegeln. Insbesondere bezieht sich die Einkapselung im Allgemeinen auf das Mitziehen oder andere Anhaftung, Koppeln oder Assoziation einer bestimmten Spezies mit einem festen oder halbfesten Partikel, Kügelchen, Einschluss, Partition oder Tröpfchen und ist nicht auf Zusammensetzungen beschränkt, in denen die Spezies vollständig oder teilweise in einer größeren Struktur eingeschlossen ist.
  • In einigen Aspekten sind eingekapselte Reagenzien mit Mikrokapseln assoziiert, die eine allgemein kugelförmige Form haben, obwohl sie länglich, zapfenförmig sein oder anderweitig in ihrer spezifischen Form variieren können. In einigen Fällen weisen Mikrokapseln eine oder mehr Querschnittsdimensionen auf, die weniger als 200 Mikrometer, weniger als 150 Mikrometer oder weniger als etwa 100 Mikrometer betragen. In einigen Fällen weisen Mikrokapseln der vorliegenden Offenbarung eine oder mehrere Querschnittsdimensionen auf, die zwischen etwa 10 und etwa 200 Mikrometer, zwischen etwa 20 und 150 Mikrometer, zwischen etwa 30 und 125 Mikrometer, in vielen Fällen zwischen etwa 40 und etwa 100 Mikrometer und noch anderen Fällen zwischen etwa 50 und etwa 75 Mikrometer betragen.
  • Während die Dimensionen der Mikrokapseln eine wichtige Überlegung sein können, ist in vielen Anwendungen die Variabilität in jenen Dimensionen ebenfalls ein wichtiger Gesichtspunkt. Insbesondere kann zum Beispiel der Transport einer Mikrokapsel durch ein mikrofluidisches System durch die Größe dieser Mikrokapsel signifikant beeinflusst werden. Zum Beispiel kann ein einfacher Strömungswiderstand für viel größere Mikrokapseln größer sein als für kleinere Mikrokapseln. In ähnlicher Weise kann die Neigung zur Verstopfung für größere Mikrokapseln größer sein als für kleinere Mikrokapseln. In beiden Fällen können Flussraten von Mikrokapseln durch ein mikrofluidisches System stark durch die Größe der Mikrokapseln beeinflusst werden. Dementsprechend werden in bestimmten Aspekten die hier beschriebenen Mikrokapseln als Population von Mikrokapseln mit im Wesentlichen monodispersen Querschnittsdimensionen bereitgestellt. Hinsichtlich der Querschnittsdimensionen bezieht sich der Ausdruck im Wesentlichen monodispers auf eine Population, die von der mittleren Querschnittsdimension (z. B. als Variationskoeffizient ausgedrückt und als Prozentsatz angegeben) um nicht mehr als 50%, nicht mehr als 40%, nicht mehr als 30%, nicht mehr als 20% oder in manchen Fällen nicht mehr als 10% abweicht.
  • Ob im Zusammenhang mit der Erzeugung von Mikrokapseln zur Verwendung beim Mitziehen oder Einkapseln von Reagenzien oder bei der Verteilung wässriger Fluide in nichtwässrigen Tröpfchen, können die Vorrichtungen und Systeme der vorliegenden Offenbarung eine ähnliche Architektur einsetzen. In einem vereinfachten Beispiel kann diese Architektur ein erstes Kanalsegment umfassen, das mit einem ersten Knoten fluidisch verbunden ist, das das erste Kanalsegment mit einem zweiten Kanalsegment und einem dritten Kanalsegment in fluidisch verbindet. Das zweite Kanalsegment liefert an den Knoten ein zweites Fluid, das mit dem ersten wässrigen Fluid, wie einem Öl, nicht mischbar ist, das die Bildung von wässrigen Tröpfchen innerhalb des Stroms von nicht mischbarem Fluid ermöglicht. Dieses zweite Fluid kann hierin als Dispersionsfluid, Trennfluid oder dergleichen bezeichnet werden. Das Strömen des ersten und zweiten Fluids durch den Knoten und in das dritte Kanalsegment wird so gesteuert, dass Tröpfchen des ersten Fluids in einen fließenden Strom des zweiten Fluids in dem dritten Kanalsegment abgegeben werden. Eine Vielfalt von Modifikationen dieser Grundstruktur ist verfügbar, um die Tröpfchenbildung besser zu kontrollieren und zusätzliche Fluidströme einzubringen. Wie hierin verwendet umfasst die Kontrolle von Fluidströmen sowohl die aktive Kontrolle von Fluidströmen durch die Anwendung größerer oder geringerer Antriebskräfte, um jenen Fluidstrom zu verursachen. Zusätzlich können Strömungen ganz oder teilweise durch Kontrollieren der Strömungscharakteristika von einem oder mehr der Fluide und/oder der Leitungen, durch die sie fließen, kontrolliert werden. Zum Beispiel kann der Fluidstrom durch Bereitstellen eines höheren Strömungswiderstands innerhalb einer Leitung, z. B. durch Bereitstellen einer höheren Viskosität, engeren Leitungsdimension, oder Bereitstellen größerer oder kleinerer Mikrokapseln innerhalb eines Fluidstroms oder jegliche Kombination der Obigen kontrolliert werden. In manchen Fällen wird Kontrolle durch mehrere von kontrollierter Triebkraft, kontrollierten Leitungsdimensionen und kontrollierten Fluideigenschaften, z. B. Viskosität oder Teilchenzusammensetzung, verliehen.
  • 1A stellt eine schematische Darstellung einer beispielhaften grundlegenden Kanalarchitektur zum Erzeugen von Tröpfchen in einem Kanal bereit. Wie gezeigt, sind erstes Kanalsegment 102, zweites Kanalsegment 104, drittes Kanalsegment 106 und viertes Kanalsegment 108 alle in Fluidverbindung mit dem ersten Knoten 110 bereitgestellt. 1B veranschaulicht schematisch Tröpfchenbildung innerhalb der Kanalarchitektur von 1A.
  • Wie gezeigt, strömt ein erstes wässriges Fluid 112 durch das Kanalsegment 102 in Richtung Knoten 110. Ein zweites Fluid 114, das mit dem ersten Fluid 112 nicht mischbar ist, strömt über jedes der Kanalsegmente 104 und 106 in den Knoten 110 und in das vierte Kanalsegment 108. Wenn das wässrige erste Fluid 112 den Knoten 110 erreicht, wird es durch die Strömung des zweiten Fluids 114 aus den Kanalsegmenten 104 und 106 eingeklemmt, und einzelne Tröpfchen 116 des wässrigen ersten Fluids 112 werden in das vierte Kanalsegment 108 abgegeben. In einigen Fällen kann ein Teil des vierten Kanalsegments 108 proximal zum Knoten 110 mit einem reduzierten Querschnitt (nicht gezeigt) im Vergleich zum Knoten und/oder Kanalsegmenten 102, 104 und 106 bereitgestellt werden, um Tröpfchenbildung innerhalb des vierten Kanalsegments 108 zu erleichtern.
  • Wie nachfolgend ausführlicher erörtert, können zusätzliche Kanalsegmente entweder stromaufwärts, stromabwärts oder beides von dem Knoten 110 in jeglichem von Kanalsegmenten 102, 104, 106 oder 108 bereitgestellt werden, um die Zufuhr zusätzlicher Fluide entweder in den wässrigen ersten Fluidstrom im Segment 102, z. B. zusätzliche Reagenzien, Puffer oder dergleichen, das Trennfluid in Segmenten 104 und/oder 106, oder den Tröpfchen-enthaltenden Strom in Kanalsegment 108 zu erlauben.
  • Wie zu erkennen ist, ist diese grundlegende Kanalarchitektur sowohl bei der Erzeugung von Mikrokapseln zur Einkapselung von Reagenzien als auch bei der letztlichen Partitionierung dieser eingekapselten Reagenzien mit anderen Materialien sehr nützlich.
  • In einem bestimmten Beispiel und mit Bezug auf die Fig. 1A und 1B oben kann eine erste wässrige Lösung von Polymervorläufermaterial entlang Kanalsegment 102 zu Knoten 110 als das wässrige Fluid 112 transportiert werden, während ein zweites Fluid 114, das mit dem Polymervorläufer nicht mischbar ist, aus Kanalsegmenten 104 und 106 zum Knoten 110 geliefert wird, um diskrete Tröpfchen des Polymervorläufermaterials zu erzeugen, die in Kanalsegment 108 strömen. In einigen Aspekten umfasst dieses zweite Fluid 114 ein Öl, wie etwa ein fluoriertes Öl, das ein Fluortensid zum Stabilisieren der resultierenden Tröpfchen, z. B. Hemmen anschließender Koaleszierung der resultierenden Tröpfchen, umfasst. Beispiele für besonders nützliche Trennfluide und Fluortenside sind beispielsweise in US-Patentanmeldung Nr. 2010-0105112 beschrieben, deren voller Offenbarungsgehalt hierin durch Bezugnahme in ihrer Gesamtheit für alle Zwecke eingegliedert ist. Polymervorläufermaterialien können eines oder mehr von polymerisierbaren Monomeren, linearen Polymeren oder anderen umfassen.
  • Bei der Herstellung von Gelmikrokapseln kann ein Aktivierungsagens auch mit dem wässrigen Strom 112 aus Kanal 102 kombiniert werden. In einigen Aspekten ist dieses Aktivierungsagens innerhalb der zweiten Fluidströme 114 in einem oder mehr der Kanäle 104 und 106 angeordnet, was die gleichzeitige Bildung von Tröpfchen und den Beginn einer Reaktion erlaubt, um die gewünschten Mikrokapseln 116 zu erzeugen. In dem Fall beispielsweise, in dem das Polymervorläufermaterial ein lineares Polymermaterial, z. B. ein lineares Polyacrylamid, PEG oder ein anderes lineares polymeres Material, umfasst, kann das Aktivierungsagens ein Vernetzungsmittel oder eine Chemikalie umfassen, die ein Vernetzungsmittel in dem ersten Strom aktiviert. In ähnlicher Weise kann das Aktivierungsmittel für Polymervorläufer, die polymerisierbare Monomere umfassen, einen Polymerisationsinitiator umfassen. Zum Beispiel kann in bestimmten Fällen, in denen der Polymervorläufer ein Gemisch aus Acrylamidmonomer mit einem N,N'-Bis(acryloyl)cystamin-(BAC-)Komonomer umfasst, ein Mittel wie Tetraethylmethylendiamin (TEMED) in den zweiten Fluidströmen in Kanalsegmenten 104 und 106 bereitgestellt werden, was die Kopolymerisation des Acrylamids und BAC zu einem quervernetzten Polymernetzwerk oder Hydrogel einleitet.
  • Bei Kontakt des zweiten Fluidstroms 114 mit dem ersten Fluidstrom 112 an Knoten 110 bei der Bildung von Tröpfchen kann das TEMED aus dem zweiten Fluid 114 in das wässrige erste Fluid 112 diffundieren, das das lineare Polyacrylamid umfasst, was die Vernetzung des Polyacrylamids innerhalb der Tröpfchen aktivieren wird, was zur Bildung der Gel-, z. B. Hydrogel-, Mikrokapseln 116, als feste oder halbfeste Kügelchen oder Teilchen, fuhrt.
  • Obwohl im Hinblick auf die Polyacrylamid-Einkapselung beschrieben, können auch andere „aktivierbare“ Verkapselungszusammensetzungen im Rahmen der vorliegenden Offenbarung verwendet werden. Zum Beispiel kann die Bildung von Alginattröpfchen, gefolgt von einer Exposition gegenüber zweiwertigen Metallionen, z. B. Ca2+, als ein Einkapselungsverfahren unter Verwendung der beschriebenen Prozesse verwendet werden. Ähnlich können Agarosetröpfchen durch temperaturbasiertes Gelieren, z. B. beim Abkühlen oder dergleichen, auch in Kapseln umgewandelt werden.
  • Gemäß einigen Aspekten der vorliegenden Offenbarung können ein oder mehr Reagenzien zur Zeit ihrer Bildung mit der Mikrokapsel assoziiert sein. Insbesondere können ein oder mehr Reagenzien mit einem Vorläuferreagenz zu der Polymermatrix assoziiert sein, aus der die Mikrokapsel besteht, z.B. dem linearen Polymer, so dass das/die Reagenz(ien) in der gebildete Mikrokapsel mitgezogen oder anderweitig damit assoziiert werden. Zum Beispiel kann/können das/die Reagenz(ien) an ein lineares Polymermaterial gekoppelt werden, das unter Verwendung der hierin beschriebenen Verfahren zu einer Mikrokapsel quervernetzt wird, was dazu führt, dass die Reagenzien an die gebildete und quervernetzte Gelmikrokapsel gekoppelt sind. Alternativ kann das Reagenz mit dem Polymervorläufer kombiniert werden, der aktive Bindungsstellen umfasst, die mit dem Reagens interagieren, entweder in dem Vorläuferstrom oder in der Mikrokapsel nach der Bildung. In noch anderen Aspekten kann, wie bei dem hier an anderer Stelle beschriebenen Vernetzungsaktivierungsagens, ein Aktivator auch mit dem Polymervorläufer oder der gebildeten Mikrokapsel in Kontakt gebracht werden, der Stellen auf der Polymermatrix der Mikrokapsel aktiviert, mit der die Reagenzkomponenten kovalent oder nicht-kovalent assoziieren können.
  • In die Mikrokapsel einzugliedernde Reagenzien können jegliches einer Vielzahl von verschiedenen Reagenzien oder anderen Komponenten umfassen, die bei der letztlichen Verwendung der Mikrokapsel, z. B. einer analytische Reaktion, nützlich sind. Solche Reagenzien können Markierungsgruppen (z. B. Fluoreszenzfarbstoffmoleküle, FREI-Paare, fluoreszierende Nanopartikel, fluoreszierende Proteine, Massenmarkierungen, elektrochemische Markierungen oder dergleichen) umfassen. Diese Reagenzien können biologische oder biochemische Reagenzien wie Nukleinsäuren, Nukleinsäureanaloga, Nukleinsäuremimetika, Polynukleotide oder Analoga, Oligonukleotide oder Analoga, Enzyme, Substrate, Antikörper oder Antikörperfragmente, Antigene, Epitope, Rezeptoren und Rezeptorbindungskomponenten, Proteine, Polypeptide, Aminosäuren, Polysaccharide oder praktisch jegliche Art von biochemischem Reagenz, das in einer breiten Vielfalt von Analysen nützlich ist, umfassen. Ähnlich werden Verbindungen, die auf biologische oder biochemische Systeme einwirken, auch für den Einschluss in solche Mikrokapseln vorgesehen, z. B. kleinmolekulare pharmazeutische Wirkstoffe, radiologische Verbindungen, Inhibitoren und/oder Initiatoren von biologischen oder biochemischen Verbindungen, Verbindungen chemischer Bibliotheken oder dergleichen. In bestimmten Beispielen können diese Reagenzien eine breite Vielfalt verschiedener Reagenzien umfassen, die auf gewünschte Reaktionen, die innerhalb der letztlich erzeugten Partition durchgeführt werden sollen, anwendbar sind, wie Nukleinsäurereplikationsreagenzien (z. B. Primer, Polymerasen, Nukleotide oder Nukleotidanaloga, Puffer, Kofaktoren oder dergleichen), spezifische Bindungsgruppen (z. B. Rezeptoren, Antikörper oder Antikörperfragmente, Bindungspeptide) oder jegliche andere Reagenzien (z. B. Enzyme, Substrate, Katalysatoren/Initiatoren, Substrate, Inhibitoren oder dergleichen).
  • In einem Beispiel wird ein Polynukleotid mit einer Acryditgruppe im wässrigen Flüid bereitgestellt, wobei das Polynukleotid an den Polymervorläufer vor seiner Vernetzung zu einem Kügelchen, wie hier beschrieben, gekoppelt ist. Dieses Polynukleotid kann eine oder mehr funktionelle Nukleinsäuresequenzen umfassen, wie Primersequenzen, Befestigungssequenzen, Ligationssequenzen oder Strichcodesequenzen. Siehe z. B. U.S.-Patentanmeldung Nr. 61/937,344 .
  • Sobald sie erzeugt sind, können die Mikrokapseln gesammelt werden, z. B. aus einem Speicher oder anderen Auslass am Ende von Kanalsegment 108. Die gesammelten Mikrokapseln können dann gewaschen werden, um Vernetzungsmittel, nicht vernetztes Polymer, Emulsionsöl und Tensid, jegliche anderen nicht gekoppelten Reagenzien, übergroße Mikrokapseln oder Teile davon, sowie jegliche anderen Verunreinigungen, die den Mikrokapseln während ihrer Erzeugung beigefügt wurden und die möglicherweise die Verwendung der hier beschriebenen Verfahren und Systeme beeinträchtigen könnten, zu entfernen. In einigen Aspekten werden die Mikrokapseln im Wesentlichen reine Mikrokapselzusammensetzungen umfassen. Mit im Wesentlichen reine Mikrokapselzusammensetzungen ist gemeint, dass die monodispersen Populationen von Mikrokapseln, wie oben beschrieben, und ihre assoziierten gewünschten Puffer und Reagenzien mindestens 90% der Zusammensetzung, mindestens 95% der Zusammensetzung, mindestens 99% der Zusammensetzung und in vielen Fällen mindestens 99,9% der Zusammensetzung ausmachen werden. Nach dem Waschen können diese Mikrokapseln in einer wässrigen Lösung, z. B. einem Puffer und/oder einem oder mehr ausgewählten Reagenzien, zur Verwendung bei der nachfolgenden Verarbeitung resuspendiert werden. In Übereinstimmung mit dem Obigen kann eine Vielfalt verschiedener Waschprotokolle in Reihe oder alternativ bei der Erzeugung der oben beschriebenen im Wesentlichen reinen Mikrokapseln verwendet werden. Beispielsweise kann das Waschen in einigen Fällen eine einfache Pufferaustauschwäsche umfassen, bei der die Mikrokapseln von ihrer Trägerflüssigkeit getrennt werden, z. B. durch Absetzen, Zentrifugieren, Filtrieren oder dergleichen, und dann in einer neuen Pufferlösung resuspendiert werden, die derselbe Puffer sein kann oder nicht, der ursprünglich die Mikrokapseln enthielt. Diese Art der Wäsche kann mehrmals wiederholt werden, um freie Verunreinigungen aus den Mikrokapseln zu entfernen. In alternativen oder zusätzlichen Waschschritten kann ein strengeres Waschverfahren angewendet werden, um bestimmte gebundene Spezies aus den Mikrokapseln zu entfernen. Wenn beispielsweise eine Mikrokapsel Nukleinsäure, Protein oder andere assoziierte Reagenzien umfasst, kann ein denaturierender Waschschritt verwendet werden, um zusätzliche gebundene überschüssige Proteine, Nukleinsäuren oder dergleichen zu entfernen. Zum Beispiel können die Mikrokapseln in einigen Fällen mit chaotropen Mitteln wie Harnstoff bei erhöhten Temperaturen gewaschen werden, um andere nicht kovalent gebundene Spezies zu entfernen, z. B. hybridisierte Nukleinsäuren usw. In noch anderen Aspekten können die Waschschritte kombiniert werden mit Extraktionstechniken, um Spezies zu entfernen, die im Inneren der Mikrokapseln mitgezogen werden können. Zum Beispiel können diese Extraktionsverfahren in einigen Fällen Elektroelution, osmotische Elution oder andere Techniken umfassen, um nicht kovalent gebundene Spezies aus Mikrokapseln zu ziehen.
  • In vielen Fällen sind die im Wesentlichen reinen Mikrokapselzusammensetzungen im Wesentlichen frei von aggregierten Mikrokapseln, z. B. zwei, drei, vier oder mehr Mikrokapseln, die aneinanderhaften. Die Abtrennung von aggregierten Mikrokapseln kann durch eine Vielfalt von Verfahren durchgeführt werden, einschließlich beispielsweise größen- oder flussbasierten Trennverfahren, z. B. Filtration.
  • Obwohl es mit Bezug auf die in Fig. 1A und 1B gezeigte Kanalarchitektur beschrieben wurde, versteht es sich, dass Variationen dieser Strukturen und Architekturen innerhalb des Umfangs der vorliegenden Offenbarung praktiziert werden können. Zum Beispiel kann sich in einigen Fällen die Grenzfläche des wässrigen Stroms mit dem Trennfluid von den oben beschriebenen spezifischen Architekturen unterscheiden. Insbesondere stellt, wie in 1A gezeigt, die Schnittstelle von Kanalsegments 112 mit Kanalsegmenten 104 und 106 eine Grenzfläche zwischen dem wässrigen Fluidstrom in Kanalsegment 102 und dem Trennfluid bereit. Die Tröpfchen werden gebildet, wenn das wässrige Fluid in und durch jene Grenzfläche in Kanalsegment 108 gedrückt wird. In einigen Fällen kann die Grenzfläche jedoch in einem offenen Raum oder einer Kammer oder einem Kanalsegmentverteiler innerhalb einer fluidischen Vorrichtung vorliegen, so dass die Grenzfläche als eine „Wand“ des Trennfluids vorliegt. Ein Beispiel dieser Art von Tröpfchenerzeugungsknoten ist in 1C dargestellt. Wie gezeigt, ist ein erstes Kanalsegment 122 fluidisch mit einem Fluidverteiler 132 verbunden, der einen Teil des Tröpfchenerzeugungsknotens bildet. Der Verteiler 132 ist als eine größere offene Kammer strukturiert, d. h. größer als das erste Kanalsegment, wobei ein Tröpfchenabgabekanal 134 den Verteiler verlässt, durch den gebildete Tröpfchen 138 durch den Abgabekanal oder Öffnung 134 in Kanalsegment 136 ausgestoßen werden. In einigen Fällen sind zusätzliche Seitenkanalsegmente 124 und 126 ebenfalls fluidisch verbunden mit dem Verteiler 132 bereitgestellt, ebenso wie Kanalsegmente 128 und 130. Im Betrieb wird ein erstes wässriges Fluid (z. B. das wässrige Polymervorläuferfluid wie mit Bezug auf 1B beschrieben oder das Mikrokapsel-enthaltende wässrige Fluid, die mit Bezug auf 3B unten beschrieben ist), in den Verteiler 132 geleitet. Eine nicht mischbare Flüssigkeit wird durch Seitenkanäle 128 und 130 in den Verteiler eingeführt. Innerhalb des Verteilers 132 bildet die nicht mischbare Flüssigkeit eine Grenzfläche, die den Verteiler 132 zur Tröpfchenabgabeöffnung (gezeigt als die gestrichelten Linien, die sich von Kanalsegmenten 128 und 130 zu Abgabekanal 134 erstrecken) durchquert. In einigen Fällen werden zusätzliche wässrige Fluide durch die Seitenkanäle 124 und 126 in den Verteiler eingeführt. Wenn die Fluide durch den Tröpfchenabgabekanal 134 strömen, werden die aggregierten wässrigen Fluide, d. h. die aus Kanalsegment 122 und in einigen Fällen aus Segmenten 124 und 126, vom nicht mischbaren Fluid aus Kanalsegmenten 128 und 130 umgeben und durch Abgabekanalsegment 134 in Kanalsegment 136 als Tröpfchen 138 von wässrigen Fluiden innerhalb einer nicht mischbaren Fluidemulsion ausgestoßen. Wie zu erkennen ist, wird die Steuerung der Geschwindigkeit der Tröpfchenbildung, sowie der relativen Volumina von Fluiden, die in Tröpfchen innerhalb dieser Typen von Strukturen kombiniert werden, durch viele der gleichen Mechanismen erreicht, wie oben für grundlegende Kanalschnittstellen beschrieben. Insbesondere kann ein kontrollierter Strom durch eine Anzahl von Mechanismen erreicht werden, einschließlich zum Beispiel Kontrollieren der Flussraten der Fluide, die in den Verteiler eingeführt werden, Kontrollieren der Geometrie der Kanäle, wenn sie in den Verteiler 132 eintreten, z. B. der Kanalform, Dimensionen (Tiefe und/oder Breite), Schnittstellenkonturen und -struktur, und Rücksprungs vom Verteiler verglichen mit anderen Kanälen.
  • Obwohl in 1A als eine einzelne Grenzfläche für die Tröpfchenerzeugung dargestellt, versteht es sich des Weiteren, dass die Vorrichtungen und Systeme der vorliegenden Offenbarung typischerweise gemultiplexte Tröpfchenerzeugungsgrenzflächen umfassen, um den Durchsatz zu erhöhen, mit dem man Tröpfchen zur Mikrokapselbildung oder zur Partitionierung der Mikrokapseln erzeugen kann, wie an anderer Stelle hierin beschrieben. Zum Beispiel kann eine Vorrichtung oder ein System der vorliegenden Offenbarung mehrere duplizierte Kanalnetzwerke der in 1A und/oder 1C gezeigten Architekturen umfassen. Ferner können für solche gemultiplexte Vorrichtungen oder Systeme einige der verschiedenen Kanalsegmente innerhalb der duplizierten Kanalnetzwerke gemeinsame Fluidquellen in Form eines gemeinsamen Speichers oder eines gemeinsamen Kanals oder Kanalverteilers haben, oder können zu einem gemeinsamen Auslass oder Speicher führen. Ähnlich können im Falle alternativer Architekturen mehrere Zuführkanalsegmente für wässrige Fluide in Verbindung mit der Trennfluidkammer bereitgestellt werden.
  • 2 veranschaulicht schematisch eine mikrofluidische Vorrichtung oder - vorrichtungsmodul zur Herstellung der oben beschriebenen Mikrokapseln. Wie gezeigt umfasst die mikrofluidische Vorrichtung typischerweise eine Körperstruktur 200, die in ihrem inneren Teil ein Kanalnetzwerk umfasst, das Kanalsegmente 202, 204, 206 und 208 umfasst. Diese Kanalsegmente kommunizieren alle mit einem gemeinsamen Kanalknoten 210. Die Vorrichtungskörperstruktur umfasst auch Reagenzspeicher 212 und 214. Wie gezeigt ist Reagenzspeicher 212 fluidisch mit Kanalsegment 202 gekoppelt, während Reagenzspeicher 214 mit Kanalsegmenten 204 und 206 fluidisch gekoppelt ist. Ein dritter Auslassspeicher ist als Speicher 216 gezeigt, der in Fluidverbindung mit Kanalsegment 208 bereitgestellt ist. Es versteht sich, dass der wässrige Polymergelvorläufer in Speicher 212 bereitgestellt werden kann, während das Trennfluid und das Aktivierungsagens in Speicher 214 bereitgestellt werden. Der Fluss dieser Fluide durch Knoten 210 erzeugt wie oben beschrieben die Mikrokapseln, die in Speicher 216 fließen und daraus geerntet werden.
  • Diese mikrofluidischen Vorrichtungen oder -vorrichtungsmodule können auf jeglicher einer Vielfalt herkömmlicher Arten hergestellt werden. Zum Beispiel umfassen die Vorrichtungen in einigen Fällen geschichtete Strukturen, wobei eine erste Schicht eine planare Oberfläche umfasst, auf der eine Reihe von Kanälen oder Furchen angeordnet ist, die dem Kanalnetz in der fertigen Vorrichtung entsprechen. Eine zweite Schicht umfasst eine planare Oberfläche auf einer Seite und eine Reihe von Speichern, die auf der gegenüberliegenden Oberfläche definiert sind, wobei die Speicher als Durchgänge durch die planare Schicht kommunizieren, so dass wenn die planare Oberfläche der zweiten Schicht mit der planaren Oberfläche der ersten Schicht zusammengeführt wird, die in der zweiten Schicht definierten Speicher in Fluidverbindung mit den Enden der Kanalsegmente auf der ersten Schicht angeordnet werden. Alternativ können sowohl die Speicher als auch die verbundenen Kanalstrukturen zu einem einzigen Teil hergestellt werden, wobei die Speicher auf einer ersten Oberfläche der Struktur bereitgestellt werden und sich die Öffnungen der Speicher zu der gegenüberliegenden Oberfläche der Struktur hindurch erstrecken. Das Kanalnetz wird als eine Reihe von Furchen und Merkmalen in dieser zweiten Oberfläche hergestellt. Eine dünne Laminierschicht wird dann über der zweiten Oberfläche bereitgestellt, um die endgültige Wand des Kanalnetzwerks und die Bodenfläche der Speicher bereitzustellen und diese abzudichten.
  • Diese geschichteten Strukturen können ganz oder teilweise aus polymeren Materialien wie Polyethylen oder Polyethylen-Derivaten wie zyklischen Olefin-Kopolymeren (COC), Polymethylmethacrylat (PMMA), Polydimethylsiloxan (PDMS), Polycarbonat, Polystyrol, Polypropylen oder dergleichen hergestellt werden, oder sie können ganz oder teilweise aus anorganischen Materialien wie Silizium oder anderen siliziumbasierten Materialien hergestellt werden, z. B. Glas, Quarz, Quarzglas, Borsilikatglas oder dergleichen.
  • Polymere Vorrichtungskomponenten können unter Verwendung von jeglichem einer Vielzahl von Prozessen hergestellt werden, einschließlich Prägetechniken, Mikrobearbeitung, z. B. Laserbearbeitung, oder in einigen Aspekten Spritzgießen der Schichtkomponenten, die die definierten Kanalstrukturen sowie anderer Strukturen umfassen, Z. B. Speicher, integrierte funktionelle Komponenten usw. In einigen Aspekten kann die Struktur, die die Speicher und Kanalstrukturen umfasst, unter Verwendung von beispielsweise Spritzgussverfahren hergestellt werden, um polymere Strukturen herzustellen. In solchen Fällen kann eine Laminierschicht an das geformte strukturierte Teil durch leicht verfügbare Verfahren angeheftet werden, einschließlich thermischer Laminierung, lösungsmittelbasierter Laminierung, Ultraschallschweißen oder dergleichen.
  • Es versteht sich, dass auch Strukturen aus anorganischen Materialien unter Verwendung bekannter Techniken hergestellt werden können. Zum Beispiel können Kanal- und andere Strukturen in Oberflächen mikrobearbeitet werden oder unter Verwendung von Standard-Photolithographietechniken in die Oberflächen geätzt werden. In einigen Aspekten können die mikrofluidischen Vorrichtungen oder Komponenten davon unter Verwendung dreidimensionaler Drucktechniken hergestellt werden, um den Kanal oder andere Strukturen der Vorrichtungen und/oder ihrer diskreten Komponenten herzustellen.
  • Wie zuvor erwähnt, können die oben beschriebenen Kanalarchitekturen auch ohne Weiteres bei der Partitionierung der oben beschriebenen Mikrokapseln verwendet werden, z. B. umfassend die eingekapselten Reagenzien, innerhalb von in einem nicht mischbaren Fluid erzeugten Tröpfchen, wie in einem „Wasser-in-Öl“(WO)-Emulsionssystem, wobei eine wässrige Lösung, und insbesondere eine wässrige Lösung, die die hierin beschriebenen eingekapselten Reagenzien umfasst, als partitionierte Tröpfchen innerhalb einer nicht mischbaren Dispersion oder Trennfluid, wie einem nicht mischbaren Öl, dispergiert ist.
  • 3 veranschaulicht schematisch die Partitionierung der eingekapselten Reagenzien. Wie gezeigt und mit Bezug auf die in 1A gezeigte fluidische Architektur wird ein erstes wässriges Fluid, das die Kügelchen umfasst, die mindestens ein erstes Reagenz einkapseln, durch Kanalsegment 102 in Kanalknoten 110 geströmt. Das Dispersionsfluid wird aus Seitenkanalsegmenten 104 und 106 in Knoten 110 geleitet. Das wässrige Fluid wird dann in Tröpfchen innerhalb des fließenden Stroms von Dispersionsfluid partitioniert, wobei individuelle Tröpfchen die eingekapselten Reagenzien enthalten, und in einigen Fällen nur ein einziges Reagenzkügelchen oder - kapsel enthalten.
  • Die oben beschriebene Kanalarchitektur ist in einem Beispiel eines in 3A gezeigten Kanalsystems enthalten, zum Partitionieren von Mikrokapseln, umfassend z. B. eingekapselte Reagenzien, mit Probenmaterialien zu, beispielsweise, einem Wasser-in-Öl-Emulsionssystem. Wie gezeigt ist ein erstes Kanalsegment 302 in fluidischer Verbindung mit Kanalsegmenten 304, 306 und 308 an erstem Kanalknoten 310 gezeigt. Viertes Kanalsegment 308 verbindet ersten Kanalknoten 310 fluidisch mit zweitem Kanalknoten 322, der auch fluidisch mit Kanalsegmenten 324, 326 und 328 gekoppelt ist.
  • Im Zusammenhang mit der Partitionierung von eingekapselten Reagenzien ist das Kanalsystem von 3A in 3B gezeigt. Wie gezeigt, wird ein erster Strom eines ersten wässrigen Fluids 312 umfassend Mikrokapseln 350 (z. B. wie oben beschrieben hergestellte Mikrokapseln), Kügelchen oder dergleichen, die eingekapselte Reagenzien umfassen können, durch Kanalsegment 302 in Kanalknoten 310 geströmt. Zusätzliche Ströme zweiter wässriger Fluide 352 und 354 werden aus Kanalsegmenten 304 und 306 in Kanalknoten 310 eingeführt, um sich mit dem ersten wässrigen Fluid 312, das die Mikrokapseln 350 enthält, zu vereinigen. Die durch jedes von Kanalsegmenten 304 und 306 zugegebenen wässrigen Fluide können gleich oder verschieden sein zueinander und zum Fluidteil von wässrigem Strom 312. Es versteht sich, dass die verschiedenen Kanalsegmente typischerweise fluidisch an Quellen der Fluide gekoppelt sind, die durch diese Kanalsegmente strömen sollen. Solche Fluidquellen können Speicher umfassen, die in eine Vorrichtung integriert sind oder mit einer Vorrichtung verbunden sind, oder können andere Schnittstellen mit anderen fluidischen Systemen umfassen, z. B. Spritzen, Pumpen, Fluidnetzwerken oder dergleichen, oder Schnittstellen mit externen Speichern, z. B. externen Fluidzugangssystemen zum Aufziehen von Fluiden aus Röhren, Fläschchen, Vertiefungen oder dergleichen, oder sogar externe Verarbeitungssysteme, z. B. Amplifikationssysteme, Probenmaterial-Extraktionssysteme, Filtrationssysteme, Trennsysteme, Flüssigchromatographiesysteme oder dergleichen.
  • In einigen Aspekten können die zusätzlichen wässrigen Fluide, die durch Seitenkanäle 304 und 306 zugegeben werden, Probenmaterialien umfassen, die zusammen mit den in den Mikrokapseln enthaltenen eingekapselten Reagenzien, partitioniert werden sollen. Zum Beispiel kann das zweite wässrige Fluid Probennukleinsäuren umfassen, die zusammen mit den in den Mikrokapseln enthaltenen Reagenzien in separate Tröpfchen partitioniert werden können, wie z. B. Strichcode-Sequenzen, funktionelle Sequenzen und dergleichen. Zusätzliche Reagenzien können auch in den zweiten wässrigen Fluiden zugegeben werden. In einigen Fällen, z. B. wenn die eingekapselten Reagenzien in Nukleinsäurereplikations- oder -synthesereaktionen eingesetzt werden sollen, können die zusätzlichen Fluide Reagenzien für solche Reaktionen enthalten, wie DNA-Polymeraseenzym(e), Primersequenzen, Nukleotide oder Nukleotidanaloga, Reaktionskofaktoren, Puffer und dergleichen, sowie jegliches einer Vielfalt anderer Reagenzien, z. B. Farbstoffe, Markierungen, Chelatbildner, Inhibitoren, Initiatoren, Substrate usw.
  • In einigen Fällen können die Reagenzien, die zugegeben werden, Reagenzien enthalten, die die Freisetzung der eingekapselten Reagenzien in die resultierenden Tröpfchen stimulieren. Zum Beispiel können in einigen Fällen die Reagenzien über eine Disulfidbindung oder eine andere chemisch spaltbare Bindung mit der Mikrokapsel assoziiert sein, oder die Mikrokapseln können strukturell durch Disulfidvernetzung oder andere chemisch spaltbare Vernetzer zusammengehalten werden. Daher kann die Zugabe eines Reduktionsmittels wie Dithiothreitol (DTT) zur letztlichen Freisetzung der Reagenzien auf den Mikrokapseln führen, entweder durch direkte Freisetzung oder durch Auflösung der Mikrokapsel oder beides (siehe z. B. U.S.-Patentanmeldung Nr. 61/940,318 , eingereicht am 14. Februar 2014). Alternativ oder zusätzlich können andere spaltbare Bindungen verwendet werden, um Mikrokapseln zu vernetzen. Beispiele solcher Bindungen umfassen z. B. durch Licht oder chemisch spaltbare Bindungen und Vernetzer.
  • Der vereinigte wässrige Strom, z. B. aus Fluiden 312, 352 und 354, fließt durch Kanalsegment 308 in Kanalknoten 322. Ein drittes Fluid 314, das mit dem vereinigten wässrigen Strom, der aus Kanalsegment 308 strömt, nicht mischbar ist, wird aus jedem von Kanalsegmenten 324 und 326 in Kanalknoten 312 eingeführt, um Tröpfchen 356 zu bilden, die die Mikrokapseln 350 sowie eine gewisse Menge der vereinigten wässrigen Fluide umfassen. In vielen Fällen umfasst dieses dritte, nicht mischbare Fluid ein Öl, wie etwa ein fluoriertes Öl umfassend ein Fluortensid, wie oben beschrieben, das zur Bildung von Wasser-in-Öl-Emulsionen mit stabilisierten resultierenden Tröpfchen geeignet ist. Andere geeignete Emulsionssysteme können in manchen Fällen Silikon- und Kohlenwasserstofföl/Tensid-Systeme umfassen.
  • Wie oben angedeutet, sind die hierin beschriebenen Vorrichtungen nützlich bei der Bereitstellung der Mikrokapseln innerhalb wässriger Tröpfchen in einem nicht mischbaren Fluid. Es versteht sich, dass es in einer Anzahl von Anwendungen besonders vorteilhaft ist, ein gewünschtes Niveau an Mikrokapselbesetzung in den erzeugten Partitionen bereitzustellen. Im Allgemeinen wird dies erreicht durch das Kontrollieren der Verbindung des wässrigen Stroms, der die Mikrokapsel umfasst, und der Ströme des nicht mischbaren Fluids, so dass die Wahrscheinlichkeit, dass mehr als die gewünschte Anzahl an Mikrokapseln in eine gegebene Partition eingegliedert wird, annehmbar niedrig ist. Dies kann im Allgemeinen erreicht werden durch Kontrolle des Stroms der Mikrokapseln, zusammen mit dem Strom der anderen Fluide, die in der Partitionszone, z. B. Knoten 322 in 3, zusammenkommen, können kontrolliert werden, so dass im Wesentlichen eine gewünschte Anzahl an Mikrokapseln pro Partition bereitgestellt wird.
  • In vielen Fällen werden die Vorrichtungen, Systeme und Verfahren verwendet, um sicherzustellen, dass die substantielle Mehrheit besetzter Partitionen (z. B. Partitionen, die eine oder mehr Mikrokapseln enthalten), nicht mehr als 1 Mikrokapsel pro besetzter Partition umfassen wird. Insbesondere wird in einigen Fällen der Partitionierungsprozess so kontrolliert, dass weniger als 50% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel enthalten, weniger als 45% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel enthalten, weniger als 40% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel enthalten, weniger als 35% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel enthalten, weniger als 30% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel enthalten, weniger als 25% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel enthalten, und in vielen Fällen, weniger als 20% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel haben, während in manchen Fällen weniger als 10% oder sogar weniger als 5% der besetzten Partitionen mehr als eine Mikrokapsel pro Partition umfassen werden. Dementsprechend werden in vielen Fällen die resultierenden Partitionen dazu führen, dass mindestens 50% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel (d. h. eine einzige Mikrokapsel) enthalten, mindestens 55% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 60% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 65% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 70% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 75% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 80% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 80% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 85% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, mindestens 90% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten, und in einigen Fällen mindestens 95% der Partitionen eine und nur eine Mikrokapsel enthalten.
  • Zusätzlich oder alternativ ist es in vielen Fällen wünschenswert, die Erzeugung einer übermäßigen Anzahl leerer Partitionen zu vermeiden. Während dies durch das Bereitstellen einer ausreichenden Anzahl von Mikrokapseln in der Partitionierungszone erreicht werden kann, kann die Poisson-Verteilung erwartetermaßen die Anzahl von Partitionen erhöhen, die mehrere Mikrokapseln enthalten. Daher wird in Übereinstimmung mit Aspekten der vorliegenden Offenbarung der Strom von einem oder mehr der Mikrokapseln oder anderer in die Partitionierungszone geleiteter Fluide so kontrolliert, dass in vielen Fällen nicht mehr als 50% der erzeugten Partitionen unbesetzt sein werden, d. h. weniger als 1 Mikrokapsel umfassen, nicht mehr als 25% der erzeugten Partitionen oder nicht mehr als 10% der erzeugten Partitionen unbesetzt sein werden. Weiter werden in einigen Aspekten diese Ströme so kontrolliert, dass sie eine nicht-Poisson'sche Verteilung einzelbesetzter Partitionen aufweisen, während niedrigere Niveaus unbesetzter Partitionen bereitstellen. Anders formuliert werden in einigen Aspekten die oben genannten Bereiche unbesetzter Partitionen erreicht werden, während immer noch jegliche der oben beschriebenen Einzelbesetzungsraten wie oben beschrieben bereitgestellt werden. Zum Beispiel erzeugt in vielen Fällen die Verwendung der Vorrichtungen, Systeme und Verfahren der vorliegenden Offenbarung resultierende Partitionen, die Mehrfachbesetzungsraten von weniger als 25%, weniger als 20%, weniger als 15%, weniger als 10%, und in vielen Fällen weniger als 5% haben, während sie unbesetzte Partitionen von weniger als 50%, weniger als 40%, weniger als 30%, weniger als 20%, weniger als 10%, und in einigen Fällen weniger als 5% haben. Verfahren, Systeme und Vorrichtungskonfigurationen, zur Kontrolle der verschiedenen Ströme innerhalb der Kanalnetzwerke werden nachfolgend ausführlicher beschrieben.
  • Obwohl beschrieben mit Bezug auf die Bereitstellung im Wesentlichen einzeln besetzter Partitionen, ist es oben in bestimmten Fällen wünschenswert, mehrfach besetzte Partitionen bereitzustellen, z. B. umfassend zwei, drei, vier oder mehr Mikrokapseln in einer einzelnen Partition. Dementsprechend können, wie oben erwähnt, die Flusscharakteristika der Mikrokapsel-enthaltenden Fluide und Trennfluide kontrolliert werden, um solche mehrfach besetzten Partitionen zu liefern. Insbesondere können die Flussparameter kontrolliert werden, um eine gewünschte Besetzungsrate bei mehr als 50% der Partitionen, mehr als 75% der Partitionen und in manchem Fall mehr als 80%, 90%, 95% oder mehr bereitzustellen.
  • Zusätzlich können in vielen Fällen die mehreren Mikrokapseln innerhalb einer einzelnen Partition verschiedene darin eingekapselte Reagenzien umfassen. In solchen Fällen kann es vorteilhaft sein, verschiedene Mikrokapseln in einen gemeinsamen Kanal oder Tröpfchenerzeugungsknoten, aus verschiedenen Mikrokapselquellen, d. h. umfassend verschiedene eingekapselte Reagenzien, durch verschiedene Kanaleinlässe in einen solchen gemeinsamen Kanal oder Tröpfchenerzeugungsknoten einzuführen. In solchen Fällen können der Fluss und die Frequenz der verschiedenen Mikrokapseln in den Kanal oder Knoten kontrolliert werden, um das gewünschte Verhältnis von Mikrokapseln aus jeder Quelle bereitzustellen, während die gewünschte Paarung oder Kombination solcher Mikrokapseln in einer Partition sichergestellt wird.
  • Obwohl mit zwei Knoten und ihren assoziierten Kanalsegmenten gezeigt, versteht es sich, dass zusätzliche Kanäle in den Vorrichtungen der vorliegenden Offenbarung bereitgestellt werden können, um zusätzliche Komponenten in die verschiedenen oben beschriebenen Fluide, Kapseln und Partitionen einzubringen. Diese zusätzlichen Kanäle können durch Schneiden von jeglichem der verschiedenen hierin beschriebenen Kanalsegmente zur Zugabe einer Vielfalt von Komponenten zu jeglichem einen oder mehr der verschiedenen Fluide, die in jenen Kanalsegmenten fließen, an unterschiedlichen Positionen und für verschiedene Zwecke bereitgestellt werden. Zum Beispiel können in einem Aspekt ein oder mehr zusätzliche Seitenkanäle bereitgestellt werden, die das oben beschriebene Kanalsegment 328 schneiden, zum Zweck der Einführung neuer Fluide, Reagenzien oder zusätzlicher Trennfluide in partitionierte Fluide innerhalb des Kanalsegments 328.
  • Ähnlich können Zusätzliche Kanalsegmente bereitgestellt werden, die Kanalsegmente 302 und/oder 308 schneiden, um zusätzliche Fluide in den wässrigen Strom einzuführen, bevor jener Fluidstrom mit dem Trennfluid in Tröpfchen partitioniert wird. Zusätzlich können noch weitere Kanalsegmente bereitgestellt werden, die jegliches der Seitenkanalsegmente, z. B. Kanalsegmente 304, 306, 324 oder 326, schneiden, um ausreichend Fluide in jene Segmente einzubringen. Solche Systeme können das Wechseln der Fluide, die in den Partitionierungsstrom eingeführt werden, in Echtzeit ermöglichen, durch Kontrollieren, welche Fluide durch die jeweiligen Seitenkanäle bereitgestellt werden, z. B. einem erlauben, Reaktanten zu ändern, die Trennfluidcharakteristika zu ändern, oder jegliche einer Vielfalt anderer Bedingungen.
  • In einigen Fällen können diese zusätzlichen Fluide dazu dienen, verschiedene Reaktionen innerhalb der Partitionen durch Einführen neuer Reagenzien in die Partitionen zu stimulieren. Zum Beispiel können diese zusätzlichen Fluide den Partitionen oder Kapseln ein oder mehr Aktivierungsagenzien bereitstellen, die die Initiierung einer oder mehr Reaktionen in jeglichem Stadium vor oder nach der Partitionierung bewirken.
  • Solche Aktivierungsagenzien können irgendeine von jegliche einer Anzahl verschiedener Formen annehmen. Zum Beispiel können diese Aktivierungsreagenzien die Freisetzung eines Reagenzes innerhalb einer Partition oder Kapsel bewirken, um es für die Reaktion verfügbar zu machen, z. B. durch Spalten einer Verknüpfung zwischen einer Mikrokapsel und dem Reagenz oder durch Stimulieren des Zerfalls der Mikrokapsel und der nachfolgenden Reagenzfreisetzung. Alternativ oder zusätzlich kann das Aktivierungsreagenz einen Initiator für eine gewünschte Reaktion umfassen, wie ein fehlendes kritisches Reagenz für die gewünschte Reaktion oder dergleichen. Als Beispiel und zum Zweck der Veranschaulichung kann ein Aktivierungsreagenz in Fällen, in denen die gewünschte Reaktion eine Nukleinsäurepolymerase-vermittelte Nukleinsäurereplikation umfasst, ein fehlendes Schlüsselreagenz umfassen, wie ein oder mehr Nukleosidtriphosphate, die ansonsten aus dem Gemisch fehlen, eine Primersequenz oder ein oder mehr Reaktionskofaktoren, die für eine Polymerasereaktion geeignet sind, z. B. divalente Metallionen wie Magnesium oder Mangan. In vielen Fällen wird die Verwendung derartiger fehlender Systeme oder aktivierbarer Reagenzsysteme zum Zweck der kontrollierten Initiierung einer gegebenen Reaktion als „Heißstart“- Reagenzien bezeichnet, die als eine allgemeine Klasse, in Verbindung mit den Systemen der vorliegenden Offenbarung nützlich sind.
  • Die Aktivierungsreagenzien können alternativ oder zusätzlich Reaktionen an den Partitionen oder Kapseln selbst oder an beiden initiieren, z. B. Aufbrechen der Kapseln oder Freisetzen von Reagenzien aus jenen Kapseln, Stabilisieren oder Destabilisieren von Partitionen, z. B. um Koaleszenz zu verringern bzw. zu fördern. Eine Vielfalt von Reagenzsystemen kann beim Aufbrechen der oder der Freisetzung von Reagenzien aus den Mikrokapseln der vorliegenden Offenbarung eingesetzt werden. Diese umfassen die Verwendung der oben beschriebenen chemischen Stimuli zur Spaltung chemischer Vernetzung oder molekularer Bindung, wie in der U.S.-Patentveröffentlichung Nr. 2014/0378345 diskutiert.
  • 4 stellt eine schematische Darstellung einer beispielhaften mikrofluidischen Gesamtvorrichtung oder eines Vorrichtungsmoduls zum Partitionieren eingekapselter Reagenzien bereit, wie oben beschrieben. Wie in 4 gezeigt, stellt die Gesamtvorrichtung 400 ein oder mehr Kanalnetzwerkmodule 450 zum Erzeugen partitionierter Mikrokapselzusammensetzungen bereit. Wie gezeigt, umfasst das Kanalnetzwerkmodul 450 eine grundlegende Architektur ähnlich der in 3B oben gezeigten. Insbesondere umfasst das dargestellte Kanalnetzwerkmodul einen ersten Kanalknoten 410, der Kanalsegmente 402 ,404 und 406 verbindet, sowie Kanalsegment 408, das ersten Knoten 410 mit zweitem Kanalknoten 422 verbindet. Außerdem sind Kanalabschnitte 424,426 und 428 mit zweitem Knotenpunkt 422 verbunden.
  • Wie veranschaulicht, ist Kanalsegment 402 auch fluidisch mit Speicher 430 gekoppelt, das zum Beispiel eine Quelle von Mikrokapseln bereitstellt, die ein oder mehr eingekapselte Reagenzien umfassen können, die in einer wässrigen Lösung suspendiert sind. Jedes von Kanalsegmenten 404 und 406 ist in ähnlicher Weise fluidisch mit Fluidspeicher 432 gekoppelt, das zum Beispiel eine Quelle von Probenmaterial sowie andere Reagenzien bereitstellen kann, die zusammen mit den Mikrokapseln partitioniert werden sollen. Wie zuvor erwähnt, können diese Kanalsegmente, obwohl beide Kanalsegmente 404 und 406 als mit dem gleichen Speicher 432 gekoppelt dargestellt sind, mit verschiedenen Speichern gekoppelt sein, um verschiedene Reagenzien oder Materialien einzuführen, die zusammen mit den Mikrokapseln partitioniert werden sollen.
  • Jedes von Kanalsegmenten 402, 404 und 406 kann mit zusätzlichen Fluidkontrollstrukturen versehen sein, wie etwa passivem Fluidventil 436. Diese Ventile können für ein kontrolliertes Befüllen der Gesamtvorrichtungen sorgen, indem sie die Kapillarkräfte brechen, die die wässrigen Fluide am Punkt der Verbreiterung des Kanalsegments in der Ventilstruktur in die Vorrichtung ziehen. Kurz werden wässrige Fluide zuerst in Speichern 430 und 432 in die Vorrichtung eingeführt, an welchem Punkt diese Fluide durch Kapillarwirkung in ihre jeweiligen Kanalsegmente gezogen werden. Nach Erreichen der Ventilstruktur wird der erweiterte Kanal die Kapillarkräfte brechen, und der Fluidstrom wird stoppen, bis äußere Kräfte, z. B. positive oder negative Drücke, auf ihn wirken, die das Fluid in und durch die Ventilstruktur treiben. Obwohl als eine Verbreiterung des Kanals in der Breitenabmessung dargestellt, versteht es sich, dass eine passive Ventilstruktur eine Erhöhung in jeglicher einen oder mehr Querschnittsdimensionen einer Kanalregion umfassen kann. Zum Beispiel kann ein passives Ventil eine erhöhte gestufte Tiefe eines Kanals im Ventilbereich erhöhen. Wiederum, wenn das Fluid das Kanalsegment mit vergrößertem Querschnitt erreicht, werden die Kapillarkräfte das Fluid innerhalb des flacheren Kanals zurückhalten. Wieder kann, wie erwähnt, die Zunahme der Querschnittsdimension in jeglicher einen oder mehr Querschnittsdimensionen erfolgen, und kann eine Querschnittszunahme von mindestens etwa 5%, 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, 100% oder mehr sein. In vielen Fällen kann es zwischen etwa 5% und etwa 100% größerer Querschnitt, zwischen etwa 5% und etwa 50%, zwischen etwa 5% und etwa 20% einer Querschnittszunahme sein. Obwohl an einer bestimmten Kanalposition dargestellt, versteht es sich, dass diese Ventilstrukturen entlang irgendeiner Kanalposition innerhalb eines mikrofluidischen Kanalnetzwerks angeordnet sein können, einschließlich eines Schnittpunkts von zwei oder mehr Kanalsegmenten oder innerhalb eines einzelnen Kanals.
  • In Kanalsegment 402 ist auch eine Mikrokapseltrichterstruktur 452 gezeigt, die sowohl das effiziente Sammeln von Mikrokapseln aus Speicher 430, die Regulierung des Mikrokapselstroms (wie hierin an anderer Stelle ausführlicher beschrieben), als auch ein reduziertes Systemversagen auf Grund von Kanalverstopfung ermöglicht. Wie ebenfalls gezeigt, kann in einigen Fällen die Verbindung von Kanalsegment 402 mit Speicher 430 sowie den Knoten von einem oder mehr oder allen der Kanalsegmente und ihrer jeweiligen Speicher mit zusätzlichen funktionalen Elementen versehen sein, wie etwa Filterstrukturen, z. B. Säulen, Pfosten, gewundenen Fluidpfaden oder anderen blockierenden Strukturen, um zu verhindern, dass unerwünschtes Partikelmaterial in die Kanalsegmente eindringt oder sich darin fortschreitet.
  • Knoten 410 ist fluidisch mit zweitem Knoten 422 gekoppelt. Ebenfalls mit Kanalknoten 422 gekoppelt sind Kanalsegmente 424 und 426, die ihrerseits fluidisch mit Speicher 438 gekoppelt sind, das zum Beispiel Trennfluid bereitstellen kann, das mit den aus Knoten 410 strömenden wässrigen Fluiden nicht mischbar ist. Kanalsegmente 424 und 426 wiederum sind als mit dem gleichen Speicher 438 gekoppelt dargestellt, obwohl sie mit verschiedenen Speichern gekoppelt sein können, z. B. wobei gewünscht ist, dass jedes Kanalsegment eine andere Zusammensetzung zu Knoten 422 liefert, z. B. Trennfluide mit unterschiedlicher Zusammensetzung einschließlich unterschiedlicher Reagenzien oder dergleichen.
  • Bei einem beispielhaften Betrieb werden in Speicher 430 bereitgestellte Mikrokapseln, durch Kanalsegment 402 in ersten Kanalknoten 410 geströmt. Die Mikrokapseln werden durch Ventil 436 strömen, das zusätzlich zum Bereitstellen einer passiven Fluidventilstruktur auch als ein Mikrokapsel-Durchflussregler wirkt, wie nachstehend ausführlicher beschrieben. Der Mikrokapsel-Durchflussregler stellt einen gleichmäßigeren Strom von Mikrokapseln in und durch Knoten 410 in Kanalsegment 408 sicher. Innerhalb von Knoten 410 wird die wässrige Mikrokapsellösung mit den wässrigen Fluiden aus Speicher 432 in Kontakt gebracht, wie durch Kanalsegmente 404 und 406 eingeführt. Auf Grund laminarer Strömungscharakteristika der mikrofluidischen Kanalnetzwerke, und ohne an eine bestimmte Theorie des Betriebs gebunden zu sein, können wässrige Fluide aus Kanalsegmenten 404 und 406 die Mikrokapselzusammensetzung mit einer zweiten wässrigen Fluidschicht umhüllen, wobei die primäre Wechselwirkung zwischen den beiden Fluiden einfache Diffusion ist, d. h. mit einem wesentlichen Mangel an konvektiver Vermischung.
  • Der wässrige Fluidstrom wird dann durch Kanalsegment 408 in zweiten Knoten 422 geströmt. Innerhalb Kanalknoten 422 wird der wässrige Fluidstrom, einschließlich der regelmäßig beabstandeten strömenden Mikrokapseln, der durch Kanalsegment 408 strömt, zu Tröpfchen innerhalb des aus Kanalsegmenten 424 und 426 eingeführten nicht mischbaren Trennfluids geformt. In einigen Fällen können eines oder beide der Partitionierungsknoten, z. B. Knoten 422 und eines oder mehr der mit jenem Knoten gekoppelten Kanalsegmente, z. B. Kanalsegmente 408, 424, 426 und 428, weiter konfiguriert sein, den Partitionierungsprozess am Knoten zu optimieren.
  • Weiter kann, obwohl als Kreuzkanalschnittpunkt dargestellt, an dem wässrige Fluide durch Kanalsegment 408 in Partitionierungsknoten 422 geströmt werden, um durch die nicht mischbaren Fluide aus Kanalsegmenten 424 und 426 partitioniert zu werden, und in Kanalsegment 428 geströmt werden, wie an anderer Stelle hierin beschrieben, die Partitionierungsstruktur innerhalb einer mikrofluidischen Vorrichtung der vorliegenden Offenbarung eine Anzahl unterschiedlicher Strukturen umfassen.
  • Wie hierin an anderer Stelle ausführlicher beschrieben, wird der Strom der Mikrokapseln in Knoten 422, und in einigen Fällen die Flussrate der anderen wässrigen Fluide und/oder Trennfluide durch jeden der Knoten 410 und 422, kontrolliert, um ein gewünschtes Niveau an Partitionierung in Mikrokapseln bereitzustellen, z. B. um die Anzahl an Mikrokapseln, die in jedes Tröpfchen partitioniert werden, die Menge an Reagenzien in jedem Tröpfchen zu kontrollieren, und den Gesamtbetrieb der Vorrichtung zu kontrollieren, z. B. um Verstopfung oder andere Störung zu verhindern, oder dergleichen.
  • Sobald die Mikrokapseln aufgeteilt sind, werden sie durch das Kanalsegment 428 und in eine Wiedergewinnungsstruktur oder -zone geleitet, wo sie leicht geerntet werden können. Wie gezeigt, umfasst die Wiederherstellungszone beispielsweise das Auslassspeicher 438. Alternativ kann die Wiedergewinnungszone eine beliebige Anzahl verschiedener Schnittstellen enthalten, einschließlich fluidischer Schnittstellen mit Röhren, Bohrungen, zusätzlichen Fluidnetzwerken oder dergleichen. In einigen Fällen, in denen die Rückgewinnungszone ein Auslassspeicher umfasst, ist das Auslassspeicher so strukturiert, dass es ein Volumen aufweist, das größer ist als das erwartete Volumen von Fluiden, die in diesen Speicher fließen. In seinem einfachsten Sinn kann das Auslassspeicher in einigen Fällen eine Volumenkapazität haben, die gleich oder größer ist als das kombinierte Volumen der Eingangsspeicher für das System, z. B. Speicher 430, 432 und 434.
  • Es versteht sich, dass eine einzelne mikrofluidische Vorrichtung mehrere im Wesentlichen identische Kanalnetzwerkmodule umfassen kann, die jeweils eigenständige Fluidquellen haben können oder sich ein oder mehr Fluidspeicher teilen können. Zum Beispiel kann eine einzelne gemultiplexte Vorrichtung, die mehrere Kanalnetzwerkmodule umfasst, eine einzelne Quelle von einem oder mehr des Trennfluids, des Mikrokapsel-enthaltenden Fluids, eines oder mehr Reagenzfluide sowie Probenfluide umfassen. Somit können die mehreren Kanalmodule verwendet werden, um große Mengen des gleichen Typs von partitionierten Mikrokapseln zu erzeugen, z. B. durch Bereitstellen derselben Zuteilung von Fluiden in den entsprechenden Speichern jedes Moduls 450 in einer gemultiplexten Vorrichtung. In bestimmten Aspekten werden jedoch verschiedene Kanalnetzwerkmodule bei der Erzeugung verschiedener partitionierter Mikrokapseln verwendet werden. Solche verschiedenen partitionierten Zusammensetzungen können verschiedene Probenmaterialien, die den partitionierten Mikrokapseln zugeteilt werden, verschiedene anfängliche Mikrokapseln, die demselben oder verschiedenen Probenmaterialien zugeteilt werden, oder Anwendung verschiedener Reagenzien auf verschiedene auf dieselben oder verschiedene Probenmaterialien und/oder verschiedene Mikrokapseln umfassen. Wie oben erwähnt, kann es, wo dieselben Fluide in die Kanalsegmente verschiedener Module eingeführt werden, effizient sein, solche Kanalsegmente mit dem/n gleichen Speicher(n) fluidisch zu koppeln. Diese Kanalsegmente können dieselben korrespondierenden Kanalsegmente in jedem Modul sein oder, abhängig von der gewünschten Verwendung, sie können verschiedene Kanalsegmente in verschiedenen Modulen sein.
  • Es versteht sich, dass die Raten, mit denen verschiedene Fluide in den oben beschriebenen Kanalstrukturen zusammengebracht werden, einen Einfluss auf die Erzeugung der Tröpfchen haben können, sei es zum Zwecke der Mikrokapselerzeugung oder zur anschließenden Trennung in diskrete Partitionen oder Tröpfchen. Dementsprechend stellen die in der vorliegenden Offenbarung verwendeten Vorrichtungen in bestimmten Aspekten eine Kontrolle der verschiedenen Fluidströme innerhalb der integrierten Kanalnetzwerke bereit. Die Kontrolle von Fluidströmen in Kanalnetzwerken kann durch eine Vielfalt an Mechanismen erreicht werden. Zum Beispiel können Drücke am Ursprung verschiedener Kanalsegmente, z. B. an Speichern, angelegt werden, um den Fluidstrom innerhalb jenes Kanalsegments zu kontrollieren. Durch Verwenden eines druckbasierten Stroms kann man in der Lage sein, Ströme innerhalb verschiedener Kanalsegmente unabhängig zu kontrollieren, indem unabhängig kontrollierte Druckquellen mit den verschiedenen Kanalsegmenten gekoppelt werden, um Differenzialdruckgradienten über jedes Kanalsegment anzulegen. In solchen Fällen können Flussraten innerhalb verschiedener Kanalsegmente überwacht werden, z. B. durch Schnittstellen-Detektionssysteme, wie optische Detektoren, um eine Rückmeldung über die Strömungskontrollaspekte zu liefern, um Modulation des Stroms zu ermöglichen.
  • Alternativ kann eine einzige Druckquelle zugleich mit allen Kanalsegmenten gekoppelt werden, z. B. durch Koppeln einer Druckquelle an einen Verteiler, der zugleich an die verschiedenen Kanalsegmentursprünge oder -speicher gekoppelt ist. Wenn ein einzelner Druck an mehreren Kanälen angelegt wird, werden die Flussraten innerhalb jener Kanäle durch den Widerstandswert in jedem Kanal kontrolliert, der der Fluidviskosität und den Kanaldimensionen (Querschnitt und Länge) unterliegt. In solchen Fällen wird Strömungskontrolle durch Vorsehen von Kanalsegmenten mit den geeigneten Dimensionen erreicht, um die gewünschte Flussrate zu erreichen, bei gegebener Viskosität der durch sie hindurchgehenden Fluid. Um beispielsweise äquivalente Flussraten zu erreichen, können Kanäle, die zum Strömen viskoserer Fluide verwendet werden, mit breiteren und/oder kürzeren Kanalsegmenten ausgestattet sein als Kanäle, die zum Transport von Fluiden niedrigerer Viskosität verwendet werden.
  • Obwohl als eine Druckquelle beschrieben, die an Kanalursprüngen angelegt wird, kann die Druckquelle in einigen Aspekten eine Vakuum- (oder Unterdruck-)Quelle umfassen, die an einem oder mehr der Auslassöffnungen für ein Kanalnetzwerk angelegt wird, z. B. einem Endspeicher, d. h. Speicher 444 in 4. Das Anlegen eines Vakuums bietet eine Anzahl von Vorteilen gegenüber von einem positiven Druck betriebenen Systemen, einschließlich z. B. Bereitstellung eines einzigen Verbindungspunkts zu einem integrierten Kanalnetzwerk am Auslass- gegenüber mehreren Einlasspunkten, Abwesenheit von Mikrokapselkompression, die zu Verstopfung des Kanaleinlasses in Überdrucksystemen führen kann, und dergleichen.
  • In einigen Fällen kann die Vakuumquelle zum Partitionieren von Mikrokapseln an einem Knoten an einem Auslasskanalsegment angelegt werden, der sich von der Zone unterscheidet, an der die partitionierten Mikrokapseln geerntet werden können. Insbesondere wenn eine Vakuumquelle am Endspeicher, z. B. Speicher 438 in 4, angelegt wird, kann die Quelle vom Speicher getrennt sein, um die partitionierten Mikrokapseln aus dem Endspeicher zu ernten. In einigen Fällen kann durch Trennen des Vakuumquellen-Schnittstellenknotens mit dem Kanalsegment von der Zone, wo die partitionierten Mikrokapseln geerntet werden, die Notwendigkeit vermieden werden, die Vakuumquelle abzutrennen und die Benutzerfreundlichkeit zu verbessern. In einigen Fällen kann der Vakuumschnittstellenknoten einen Endspeicher umfassen, z. B. Speicher 438, das mit einer Schnittstellenkomponente zum Anschließen an eine integrierte oder diskrete Partitionserntezone konfiguriert sein kann, die das Ernten der Partitionen ohne Entfernen der angelegten Vakuumquelle ermöglicht. Diese und andere Schnittstellenkomponenten werden nachstehend ausführlich beschrieben.)
  • III. Zusätzliche verbesserte Komponenten mikrofuidischer Systeme
  • Die präzise Handhabung und Manipulation von Mikrokapseln, entweder bei ihrer Erzeugung oder bei ihrer nachfolgenden Partitionierung, schafft eine Reihe neuer Herausforderungen in mikrofluidischen Systemen, die durch Aspekte der vorliegenden Offenbarung angegangen werden. Insbesondere kann der Fluss von Mikrokapseln in fluidischen und besonders mikrofluidischen Systemen bestimmten Variabilitäten unterliegen, von denen viele oben erwähnt wurden, einschließlich variierter Flussraten oder Abgabefrequenzen, Kanalverstopfung, variabler Partitionierung, Probennahme- oder Abgabetendenzen oder dergleichen. Diese Offenbarung stellt zahlreiche verbesserte Komponenten, Vorrichtungen, Verfahren und Systeme bereit, um viele dieser Probleme anzugehen.
  • Zum Beispiel befasst sich die vorliegende Offenbarung in bestimmten Aspekten z. B. mit Probennahmetendenzen oder -variabilität von Mikrokapseln in einem Speicher. Insbesondere sind in einigen Fällen ein oder mehr Speicher, in die Mikrokapseln in einem hierin beschriebenen System oder Vorrichtung deponiert werden, z. B. der in 4 gezeigte Speicher 430, konfiguriert, den Strom von Mikrokapseln in ihre assoziierten Kanalsegmente zu verbessern.
  • In einem Beispiel können die Speicher, die verwendet werden, um die Mikrokapseln oder andere Reagenzien bereitzustellen, mit einer konischen Bodenfläche versehen sein, um ein Trichterleiten der Mikrokapseln zu den Einlässen für die mit den Speichern verbundenen Kanalsegmente zu ermöglichen. Dies ist schematisch in 5A veranschaulicht, das ein Beispiel von Speichern 500, 502, 504 und 506 von der Seite betrachtet zeigt. Wie gezeigt, umfasst der Speicher 500 Seitenwände 510, die sich von einer oberen Oberfläche 512 einer mikrofluidischen Vorrichtung 506 erstrecken. in innerer Hohlraumbereich 508 des Speichers erstreckt sich in die mikrofluidische Vorrichtung 506 und ist in Verbindung mit einem fluidischen Kanal 516 vorgesehen. Wie gezeigt, hat Hohlraumbereich 508 eine sich verjüngende oder konische Form in Richtung des Einlasses von Kanal 516, wie er durch Verengen des Hohlraums 508 wegen konvergierender Seitenwände 518 des Hohlraums 508 definiert.
  • In zusätzlichen Aspekten kann die Mikrokapselbeladung in Kanalsegmente durch die Einbeziehung eines verbreiterten Schnittstellenbereichs oder Einlasses zwischen dem Speicher und dem verbundenen Fluidkanal verbessert werden. Ein Beispiel dafür ist in dem Kanalnetzwerk von 4 veranschaulicht, wo die Schnittstelle von Kanalsegment 402 mit Speicher 430 mit Trichterkanalstruktur 452 versehen ist, was sowohl die Einführung von Mikrokapseln in das Kanalsegment verbessert als auch gewisse stromregulierende Charakteristika für die Mikrokapseln in das Kanalsegment bereitstellt. Es sind auch blockierende Strukturen 454 gezeigt, die Barrieren für größeres Partikelmaterial darstellen, das eine Verunreinigung innerhalb des Speichers sein kann und den Strom von Fluiden durch die Kanäle der Vorrichtung beeinträchtigen kann. Es versteht sich, dass die verschiedenen Speicher jeweils oder alle Filtrations- oder Partikelblockierungselemente in sich enthalten können, die in Abhängigkeit von den in dem Speicher zu disponierenden Fluiden gleich oder verschieden sein können. Während zum Beispiel in einigen Fällen eine einfache strukturelle Barriere wie die in 4 gezeigten Säulenstrukturen (z. B. Strukturen 454 ), in den Kanalschnittstellen mit den Mikrokapsel-enthaltenden Speichern verwendet werden kann, können für solche Speicher, die wässrige Lösungen enthalten, z. B. Probenmaterialien oder Reagenzien, mehr oder weniger stringente Filtrationskomponenten darin integriert werden, z. B. am Boden eines Speichers, um den Inhalt des Speichers in situ mehr oder weniger zu filtern. Eine Vielfalt von Filtrationsmedien, einschließlich z. B. Membranfilter, Fritten oder andere bekannte Filtertypen, können leicht in die Speicher innerhalb der Vorrichtungen der vorliegenden Offenbarung eingebaut werden.
  • Ähnlich wie bei den oben beschriebenen verbreiterten Schnittstellen können die Schnittstellen mehrere diskrete Kanaleinlässe aus einem gegebenen Speicher umfassen, um sicherzustellen, dass der Strom von Mikrokapseln in und durch die Kanalsegmente weniger anfällig für Unterbrechung oder Verstopfung ist, sowie um sicherzustellen, dass im Speicher disponierte Mikrokapseln an mehreren Punkten zugänglich sind, anstatt an einem einzigen Punkt oder Kanaleinlass. Insbesondere kann für einen gegebenen Speicher eine Vielzahl von Kanaleinlässen vorgesehen sein, die den Speicher fluidisch mit einem einzelnen Kanalsegment (oder Stromregulierungsknoten, wie nachstehend ausführlicher beschrieben) innerhalb der mikrofluidischen Vorrichtung verbinden. Ferner können, wie oben beschrieben, die mehreren Kanaleinlässe mit einem oder mehr der zuvor beschriebenen funktionellen Elemente versehen sein, z. B. Trichterstrukturen, Filterelementen wie Säulen, Pfosten oder gewundenen Pfaden, oder dergleichen.
  • Wie bei der Diskussion der Mikrokapselpartitionierung oben bemerkt wurde, kann der Strom der Mikrokapseln, zusammen mit dem Strom der anderen Fluide, die in der Partitionierungszone zusammenkommen, z. B. Knoten 322 in 3, so kontrolliert werden, dass im Wesentlichen eine gewünschte Anzahl von Mikrokapseln pro Partition bereitgestellt wird. In vielen Fällen wird die wesentliche Mehrheit der besetzten Partitionen (z. B. Partitionen, die eine oder mehr Mikrokapseln umfassen) nicht mehr als 1 Mikrokapsel pro besetzter Partition umfassen, während in einigen Fällen auch die Anzahl der erzeugten unbesetzten Partitionen reduziert wird.
  • Wie oben beschrieben, erreichen die Verfahren, Vorrichtungen und Systeme der vorliegenden Offenbarung im Allgemeinen einen gewünschten Zuteilungsgrad von Mikrokapseln zu Partitionen durch die kontrollierte Kombination der Mikrokapseln und des Trenn- oder Dispersionsfluids zu Tröpfchen, z. B. durch Kontrollieren der Flussraten von Mikrokapseln und Öl in den Tropfenerzeugungsknoten einer mikrofluidischen Vorrichtung, d. h. Knoten 312, wie in 3 gezeigt.
  • Das Strömen von Mikrokapseln aus Speichern durch Kanäle und in Kanalknoten kann einer großen Maß an Variabilität unterliegen, da diese Mikrokapseln bei einem strömen können, der durch den Zufall definiert ist, wann die Mikrokapsel in ein Kanalsegment eintritt, und seine Flussrate durch jenes Kanalsegment. Dementsprechend können in bestimmten Aspekten die mikrofluidischen Systeme der vorliegenden Offenbarung Mikrokapselstromregulierungskomponenten innerhalb des geeigneten Kanalsegments umfassen, um solche Mikrokapseln bereitzustellen, die mit einer definierteren Regelmäßigkeit in den Tropfenerzeugungsbereich strömen.
  • Die Mikrokapselstromregulatoren, die in den hier beschriebenen Kanalsystemen enthalten sind, werden typischerweise Mikrokapseln bereitstellen, die in Kanälen mit einer relativ regelmäßigen Frequenz strömen. Insbesondere wird während eines gegebenen Zeitrahmens, in dem Tröpfchen erzeugt werden, z. B. einem 10-Sekunden-Fenster, einem 30-Sekunden-Fenster, einem 1-Minuten-Fenster, einem 2-Minuten-Fenster, einem 3-Minuten-Fenster oder über den stationären Betriebszustand eines gesamten Tröpfchenerzeugungdurchgangs (z. B. ohne Starten und Herunterfahren), die Frequenz, mit der diese Mikrokapseln strömen, typischerweise einen Variationskoeffizienten von weniger als 50%, weniger als 40%, weniger als 30%, weniger als 20%, weniger als 10%, und in einigen Fällen weniger als 5% haben. Es versteht sich, dass die Stromfrequenz von Mikrokapseln die Anzahl an Mikrokapseln wiedergibt, die innerhalb eines Zeitraums von einer Sekunde an einem bestimmten Punkt in einer Leitung vorbeiströmen. Frequenzmessungen können typischerweise auf Intervallen von unter einer Sekunde oder einer Sekunde basieren, können aber auch auf Intervallen von mehreren Sekunden, mehreren Minuten oder länger basieren, abhängig von den besonderen Erfordernissen des Prozesses.
  • Obwohl es in einem gegebenen Verfahren wünschenswert sein kann, Mikrokapseln mit einer relativ stabilen Frequenz zu strömen, kann sich die Frequenz für die strömenden Mikrokapseln in einer Anzahl von Aspekten abhängig von den gewünschten Anwendungen, der Art der strömenden Fluide und dergleichen unterscheiden. Im Allgemeinen werden jedoch Mikrokapseln, die in einen Partitionierungs- oder Tröpfchenerzeugungsknoten strömen, mit mehr als 50 Hz, mehr als 100 Hz, mehr als 250 Hz, mehr als 500 Hz, mehr als 750 Hz, mehr als 1000 Hz, mehr als 1500 Hz, mehr als 2000 Hz oder sogar mehr als 5000 Hz oder sogar 10 000 Hz geströmt werden, wobei immer noch die gewünschte Besetzung und andere Prozessziele erreicht werden. In bestimmten Fällen können diese Stromfrequenzen nach dem Partitionierungsknoten aufrechterhalten werden, so dass partitionierte Mikrokapseln aus dem Tröpfchenerzeugungknoten mit Frequenzen von mindestens oder mehr als 50 Hz, mindestens oder mehr als 100 Hz, mindestens oder mehr als 500 Hz, mindestens oder mehr als 750 Hz, mindestens oder mehr als 1000 Hz, mindestens oder mehr als 1500 Hz, mindestens oder mehr als 2000 Hz oder sogar mindestens oder mehr als 5000 Hz oder 10000 Hz strömen.
  • Eine Anzahl von Ansätzen kann angewendet werden, um Kügelchenströme innerhalb der mikrofluidischen Kanalsegmente der hierin beschriebenen Vorrichtungen zu regulieren. Zum Beispiel umfassen diese Regulatoren in einigen Fällen „Sammelzonen“, in die die Mikrokapseln strömen und in denen sie sich sammeln werden, bevor sie aus der Sammelzone herausströmen. Diese Zonen sind so konfiguriert, dass sie den Strom der Mikrokapseln durch den Einschluss von Trichterstrukturen oder Kanalprofilen messen, um den Strom individueller Mikrokapseln besser zu messen. Beispiele solcher Strukturen sind oben erwähnt und sind in 4 und 6B gezeigt. Ein erstes Beispiel umfasst die Kanalschnittstelle, die als Trichterzone 452 gezeigt ist, die innerhalb der Schnittstelle von Kanalsegment 402 und Speicher 430 integriert ist.
  • In ähnlicher Weise kann ein Mikrokapselstromregulator in das Kanalsegment selbst integriert sein, z. B. Kanalsegment 402 in 4, anstatt an der Schnittstelle mit dem Speicher, z. B. Speicher 430 von 4. Ein Beispiel dieser Struktur umfasst die in 6A veranschaulichte Stromregulatorstruktur 600. Es versteht sich, dass die Mikrokapselstromregulierungsstruktur 460 auch als ein passives Fluidventil während des Befüllens der Vorrichtung fungieren kann, z. B. Ventil 436, wie oben in Bezug auf Kanalsegmente 402, 404 und 406 beschrieben. Wie bei Trichterstruktur 452 enthält der Stromregulator 600 einen verbreiterten Bereich von Kanalsegment 602 (an der Schnittstelle als Kanal 602a gezeigt) im Bereich 604, der sich im Bereich 606 verengt, bis er die Querschnittsdimensionen des Auslassabschnitts von Kanalsegment 602 (an der Schnittstelle als Segment 602b gezeigt) wieder erreicht. Wenn die Mikrokapseln in den expandierten Bereich 602 eintreten, ermöglicht konvektiver Fluss, dass sich mehrere Mikrokapseln in dem gesamten Sammelbereich ansammeln oder aggregieren. Sobald eine ausreichende Anzahl von Mikrokapseln aggregiert ist, werden sie beginnen, durch den verengten Bereich in das Kanalsegment 604 in einer gemessenen und kontrollierteren Weise auszuströmen. Dies ist schematisch in 6B veranschaulicht, die Mikrokapseln zeigt, die mit unregelmäßiger Frequenz in die Mikrokapselstromregulierungsstruktur strömen und mit einer regelmäßigeren Frequenz aus dem Regulator herausströmen. Es versteht sich, dass ein Kanalnetzwerk einen oder mehr Stromregulatoren umfassen kann, die in Reihe oder parallel innerhalb eines gegebenen Flusspfades angeordnet sind, z. B. die Fluidverbindung zwischen zwei Punkten in dem Gesamtnetzwerk. Während diese Stromregulatoren diejenigen mit der Form und Konfiguration umfassen können, wie in Fig. 6A und 6B gezeigt, können sie auch unterschiedliche Formen und Konfigurationen umfassen. Zum Beispiel können die verbreiterten Bereiche des Stromregulators dreieckige Formen umfassen, ähnlich zu den in Fig. 6A und 6B gezeigten, oder können längliche dreieckige Formen umfassen. Ähnlich kann der verbreiterte Bereich der Stromregulatoren kreisförmige, elliptische oder halbkreisförmige oder halbelliptische Formen umfassen oder kann eine verjüngte Trichterform wie die hierin an anderer Stelle beschriebenen Kanalschnittstellen umfassen. Es versteht sich, dass die grundlegenden strukturellen Komponenten dieser beispielhaften Stromregulatoren ein verbreiterter Kanalbereich an dem Punkt, an dem ein Strom in den Regulator eintritt, mit einem verjüngten, verengten oder trichterförmigen Abschnitt, wenn der Strom in den nachfolgenden Kanal oder Kanalnetzwerk eintritt, ist. Diese verbreiterten Bereiche werden typischerweise breitere Querschnitte haben, die 1,1X bis 20X der Querschnitte von Kanalsegmenten sind, die in den verbreiterten Bereich fließen. In einigen Aspekten liegen diese verbreiterten Bereiche irgendwo zwischen 2X und 10X des Querschnitts des eintretenden Kanalsegments (verglichen mit der gleichen Querschnittsabmessung, z. B. Breite zu Breite, Tiefe zu Tiefe usw.), und in einigen Fällen, von 2X bis 5X des Querschnitts des eintretenden Kanalsegments. In einigen Fällen kann mehr als eine Querschnittsdimension über den Einlasskanal variiert werden, z. B. können sowohl Breite als auch Tiefe unterschiedlich sein. Obwohl weiter in einigen Aspekten, wo beide Dimensionen variiert werden, sie größer sein werden als jene des Einlasskanals, kann in einigen Fällen, vorausgesetzt dass mindestens eines von Breite und Tiefe vergrößert ist, die andere Dimension verringert sein, abhängig von den gewünschten Stromcharakteristika durch den Stromregulator.
  • In anderen Beispielen werden mehrere Mikrokapsel-enthaltende Kanäle in einer Sammelzone zusammengebracht, um eine höhere Anzahl von Mikrokapseln in den Knoten und Sein Assoziiertes Abflusskanalsegment zu bringen. Dies ermöglicht, dass Leerphasen in dem Strom von Mikrokapseln in einem Kanal durch Mikrokapseln gefüllt werden, die aus dem/n anderen Kanal/Kanälen einströmen. Diese Kanalsegmente können separate Kanalsegmente umfassen, die innerhalb des Kanalnetzwerks als Sammelzone vorgesehen sind, oder, wie oben erwähnt, sie können mehrere Einlasskanalsegmente umfassen, die mit einem Mikrokapsel-enthaltenden Speicher in fluidisch verbunden sind. Ferner können, wie oben erwähnt, diese Kanalsegmente Mikrokapseln aus einer einzigen Quelle oder Population von Mikrokapseln in dasselbe Kanalsegment einbringen, oder sie können Mikrokapseln aus verschiedenen Quellen, Z. B. Speichern, in ein gemeinsames Kanalsegment einbringen, wo solche verschiedenen Mikrokapseln verschiedene Reagenzien enthalten.
  • Wie oben erwähnt, können die mikrofluidischen Vorrichtungen und Systeme der vorliegenden Offenbarung verbesserte Schnittstellenkomponenten umfassen, die beim Betrieb der Vorrichtungen und Systeme nützlich sind, und Schnittstellenkomponenten, die bei der Handhabung und Manipulation von Mikrokapselzusammensetzungen und partitionierten Zusammensetzungen besonders nützlich sein können.
  • Beispiele für Schnittstellen, die für die Mikrokapsel- und Partitionsmanipulation nützlich sind, umfassen solche, die für eines oder beides von Deposition und Ernte solcher Zusammensetzungen in und aus solchen Vorrichtungen nützlich sind. Zum Beispiel kann, wie zuvor erwähnt, Bewegung und Transport von Mikrokapseln in Lösung einer gewissen Variabilität unterliegen. Diese Variabilität kann in einigen Fällen in den Transport dieser Lösungen aus den Systemen, in denen sie erzeugt werden, in andere Systeme und/oder Gefäße, z. B. Speichergefäße wie Röhren, Vertiefungen, Gefäße und dergleichen, in ihren Transport aus Speichergefäßen, wie Röhren, Vertiefungen, Gefäße und dergleichen, in Systeme für ihre nachfolgende Verarbeitung, z. B. mikrofluidische Partitionierungssysteme wie die oben beschriebenen, übertragen werden. In einem Beispiel wird eine Mikrokapsellösung oder -suspension innerhalb eines Speichergefäßes bereitgestellt, das eine durchstechbare Wand- oder Bodenoberfläche umfasst. Entsprechende Stechstrukturen innerhalb eines Speichers auf einer fluidischen Vorrichtung bereitgestellt sein. Durch Einführen des Speichergefäßes in den Speicher wird die durchstechbare Wand durch die Stechstrukturen penetriert, um die Mikrokapselsuspension in den Speicher zu entlassen.
  • Ein Beispiel für diese Art von Schnittstelle ist schematisch in Fig. 7A und 7B veranschaulicht. Wie in 7A gezeigt, wird ein Speichergefäß bereitgestellt, wie eine Röhre 702, zum Halten von Fluidreagenzien, wie einer Mikrokapselsuspension 704, wie an anderer Stelle hier beschrieben. Eine Oberfläche des Gefäßes, z. B. Bodenoberfläche 706, ist als eine durchstechbare Schicht bereitgestellt. Durchstechbare Schichten können in jeglicher einer Vielfalt verschiedener Konfigurationen bereitgestellt werden. Zum Beispiel können sie einfach Wände aus demselben Material wie der Rest des Gefäßes umfassen, die jedoch dünn genug sind, um Durchstechen zu ermöglichen. Solche Wände können dünner sein als andere Wände im Gefäß. Alternativ können die durchstechbaren Oberflächen andere Materialien als die des Restes des Gefäßes umfassen, wie ein durchstechbares Septum (z. B. Nitrocellulose, PVDF, Latex oder andere ähnlich verwendete Materialien), eine Folienoberfläche oder irgendeine einer Anzahl anderer durchstechbarer Membranen. Ähnlich kann eine Oberfläche des Speicherbehälters mit einer Ventilstruktur versehen sein, die aktiv oder passiv sein kann. In vielen Fällen können passive Ventile, wie druckgesteuerte Rückschlagventile, in der Bodenoberfläche 706 des Speichergefäßes eingesetzt werden.
  • Im Gebrauch ist das Speichergefäß mit dem Speicher 708 in einer Vorrichtung 710 verbunden, wie in 7B gezeigt. Der Speicher 708 ist mit Stechstrukturen 712 konfiguriert, die positioniert sind, um die Basisoberfläche 706 des Speicherbehälters zu kontaktieren und zu penetrieren, wenn das Gefäß in den Speicher 708 eingesetzt wird. Sobald die Basisoberfläche 706 eingesetzt ist, wird sie durchbrochen und die in Gefäß 702 enthaltene Mikrokapselsuspension 704 kann in Speicher 708 abfließen. In einigen Fällen kann Gefäß 702 mit zusätzlichen Komponenten versehen sein, um das Einleiten der Suspension in den Speicher zu erleichtern, wie einem Kolben oder einer anderen Druckvorrichtung, um die Suspension aus dem Gefäß zu drücken. In anderen Fällen kann einfacher Schwerkraftfluss verwendet werden, um die Suspension zu übertragen. In einigen Fällen können die Stechstruktur und die Wand- oder Bodenkomponente des Gefäßes konfiguriert sein, die Übertragung der Suspension von dem Gefäß auf den Speicher zu optimieren, durch Einschließen hydrophober innerer Beschichtungen auf dem Gefäß, blitzmildernder Stechstrukturen (z. B. um die Möglichkeit zu verringern, dass Reste der durchbohrten Oberfläche den Fluss der Suspension aus dem Gefäß heraus blockieren können). In alternativen Aspekten können auflösbare, abbaubare oder anderweitig aktivierbare Barrieren bereitgestellt werden, um die kontrollierte Abgabe der Suspension zu ermöglichen. Derartige Barrieren umfassen z. B. auflösbare Filme oder Membranen, die abgebaut, aufgelöst oder ausreichend durchlässig gemacht werden, um die Suspension nach Anlegen eines Stimulus abzugeben. Solche Barrieren können bei Anlegen eines spezifischen chemischen, thermischen, elektromagnetischen oder anderen Stimulus abgebaut werden.
  • Ähnlich wie bei den oben beschriebenen Schnittstellen können in einigen Fällen der Ernte von entweder Mikrokapseln oder partitionierten Mikrokapseln oder anderen Materialien aus Vorrichtungen solche Schnittstellenkomponenten z. B. eine durchstechbare Bodenschicht für den Erntespeicher, z. B. Speicher 216 wie in 2 gezeigt, oder Speicher 438 der in 4 dargestellten Vorrichtung, umfassen, um den Zugang zu und das Entfernen von partitionierten Mikrokapseln aus dem Endspeicher zu ermöglichen, ohne notwendigerweise die angeschlossene Vakuumquelle zu entfernen. Im Betrieb kann am Ende einer Partitionierungsoperation der Boden des Endspeichers durchstochen werden, und die erzeugten Partitionen werden entweder entfernt oder in eine wartende Aufnahme ablaufen oder fließen gelassen, z. B. durch Umkehren der Vakuumquelle, um Druck auf Speicher 438 auszuüben, um die partitionierten Mikrokapseln durch die durchstochene Bodenschicht des Speichers zu treiben, oder durch einen von der Schwerkraft angetriebenen Strom. Dieser wartende Behälter kann in die Vorrichtung integriert sein oder an die mikrofluidische Vorrichtung benachbart positioniert sein, um die partitionierten Mikrokapseln aufzunehmen.
  • In anderen Beispielen können eines oder beides von dem Speicher und dem Speichergefäß konfiguriert sein, um eine effiziente Übertragung vom einen zum anderen bereitzustellen. Zum Beispiel kann in einigen Fällen ein Gefäß, das eine Mikrokapselsuspension enthält, mit einer Schnittstellenkomponente versehen sein, die es ihm ermöglicht, mit dem empfangenden Speicher gepaart, verbunden und/oder direkt gekoppelt zu werden, um seinen Inhalt effizient zu übertragen. In manchen Fällen kann die Verbindung durch ein Rückschlagventil begrenzt werden, um Bewegung der Suspension zu verhindern, bis eine geeignete Triebkraft an die Suspension angelegt wird.
  • Zusätzlich zu fluidischen Schnittstellen können die hierin beschriebenen Vorrichtungen und Systeme auch eine oder mehr einer Vielfalt mechanischer oder physikalischer Schnittstellenkomponenten umfassen. Solche Komponenten umfassen beispielsweise Handhabungskomponenten zur Erleichterung der manuellen oder automatisierten Bewegung und Handhabung der Vorrichtungen, Ausrichtungskomponenten, um eine ordnungsgemäße Platzierung und Ausrichtung der Vorrichtungen an Instrumenten, Halter und dergleichen sicherzustellen, sowie funktionelle Komponenten, um zusätzliche Manipulation von Probenmaterialien innerhalb der Vorrichtungen zu erlauben. Beispiele von Handhabungskomponenten umfassen Laschen, Wände oder andere Oberflächen, die von kritischen oder empfindlichen Oberflächen einer Vorrichtung (z. B. optischen Fenstern, Oberflächen, die für Verschmutzung anfällig sind, usw.) entfernt positioniert sind, sowie Oberflächen, die konfiguriert sind, die Handhabung zu erleichtern, ob manuell oder automatisiert, z. B. mit ausreichender Größe und/oder texturierte Oberflächen, um Griffigkeit und Kontrolle zu gewährleisten.
  • Beispiele von Ausrichtungsstrukturen umfassen mechanische Elemente, die die Ausrichtung einer Vorrichtung mit einem entsprechenden Instrument oder einer anderen Einrichtung sicherstellen, wie beispielsweise abgeschrägte Ecken, Vorrichtungsformen und integrierte Schlüsselelemente (z. B. Laschen, Schlitze, Pfosten oder dergleichen), die sich mit komplementäre Strukturen auf der anderen Einrichtung paaren. Solche Ausrichtungskomponenten umfassen auch optisch detektierte Komponenten, wie Registrierungsmarkierungen oder Bezugsmarken, StrichcodeTags oder andere maschinenlesbare Komponenten, die in ein Gerät integriert oder daran befestigt sind.
  • Eine breite Vielfalt von funktionellen Komponenten oder funktionellen Komponentenschnittstellen sind ebenfalls vorgesehen, einschließlich z. B. jener Schnittstellenkomponenten, die für den Betrieb der Vorrichtung wichtig sind. Beispiele derartiger Schnittstellenkomponenten umfassen zum Beispiel Dichtungsstrukturen, die in die oberen Oberflächen von einem oder mehr Speichern integriert oder getrennt darauf platziert werden können, um eine abgedichtete Anlegung von Drücken oder Vakua auf die hierin beschriebenen Vorrichtungen sicherzustellen. Unter bestimmten Gesichtspunkten werden diese Dichtungen entweder in die Vorrichtung integriert oder als separate Wegwerfkomponente bereitgestellt werden, statt in ein Instrument integriert zu werden, um die Möglichkeit der Instrumentenverunreinigung zu minimieren. Andere Beispiele von funktionellen Schnittstellenkomponenten umfassen Schnittstellen zum Mischen oder Rühren von Komponenten innerhalb der Speicher. Solche Komponenten sind in manchen Fällen nützlich, um ein Absetzen von Mikrokapselzusammensetzungen zu verhindern. Diese Schnittstellen können tatsächliche Rührkomponenten umfassen, wie zum Beispiel in die Vorrichtungen integrierte piezoelektrische, akustische oder mechanische Vibrationskomponenten, oder sie können Oberflächen umfassen, die geeignet sind für oder konfiguriert sind, Schnittstellen zu bilden mit diesen Komponenten auf einem entsprechenden Instrumentensystem oder einer anderen Einrichtung.
  • Während die vorstehende Erfindung zum Zwecke der Klarheit und des Verständnisses in einigen Einzelheiten beschrieben wurde, ist es für einen Fachmann aus der Lektüre dieser Offenbarung klar, dass verschiedene Änderungen in Form und Detail vorgenommen werden können, ohne vom wahren Umfang der Erfindung abzuweichen. Zum Beispiel können alle oben beschriebenen Techniken und Vorrichtungen in verschiedenen Kombinationen verwendet werden. Zum Beispiel kann die Partikelabgabe mit Array-Gefäß-Dimensionierungsverfahren wie beschrieben durchgeführt werden.
  • ZITATE ENTHALTEN IN DER BESCHREIBUNG
  • Diese Liste der vom Anmelder aufgeführten Dokumente wurde automatisiert erzeugt und ist ausschließlich zur besseren Information des Lesers aufgenommen. Die Liste ist nicht Bestandteil der deutschen Patent- bzw. Gebrauchsmusteranmeldung. Das DPMA übernimmt keinerlei Haftung für etwaige Fehler oder Auslassungen.
  • Zitierte Patentliteratur
    • WO 2014/028537 [0024]
    • US 14/104650 [0024]
    • US 14/175935 [0024]
    • US 14/175973 [0024]
    • US 61/937344 [0024]
    • US 20100105112 [0038]
    • US 61937344 [0044]
    • US 61940318 [0059]
    • US 2014/0378345 [0070]

Claims (13)

  1. Ein mikrofluidisches System, umfassend: (a) ein mikrofluidisches Kanalnetzwerk umfassend mindestens ein erstes, zweites und drittes Kanalsegment in Fluidverbindung mit einem Tröpfchenerzeugungsknoten; (b) eine erste Fluidquelle, die fluidisch mit dem ersten Kanalsegment verbunden ist und ein erstes Fluid umfasst, das ein wässriges Fluid umfasst, wobei das wässrige Fluid eine Vielzahl von darin disponierten Mikrokapseln umfasst; (c) eine zweite Fluidquelle, die mit dem zweiten Kanalsegment fluidisch verbunden ist und ein zweites Fluid umfasst, das mit dem wässrigen Fluid nicht mischbar ist; und (d) ein Stromkontrollsystem, das mit dem mikrofluidischen Kanalnetzwerk verbunden ist, das (i) das erste Fluid und das zweite Fluid einem Strömen in den Tröpfchenerzeugungsknoten unterwirft, um Tröpfchen zu erzeugen, die Mikrokapseln umfassen, und (ii) die Tröpfchen einem Strömen ins dritte Kanalsegment unterwirft, so dass mindestens 75% der Tröpfchen mindestens eine Mikrokapsel umfassen und weniger als 25% der Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel umfassen. wobei das mikrofluidische System weiterhin eine Mikrokapselstromregulierungskomponente umfasst, die eine Frequenz breitstellt, mit der die Mikrokapseln strömen, die einen Variationskoeffizienten von weniger als 50% aufweist.
  2. Ein mikrofluidisches System, umfassend: (a) ein mikrofluidisches Kanalnetzwerk umfassend: (i) ein erstes Kanalsegment gekoppelt mit einer Quelle eines ersten wässrigen Fluids, das eine Suspension von Mikrokapseln umfasst; (ii) mindestens ein zweites Kanalsegment gekoppelt mit einer Quelle eines zweiten wässrigen Fluids, das erste und zweite Kanalsegment in Fluidverbindung an einem ersten Knoten, der das erste wässrige Fluid mit dem zweiten wässrigen Fluid in Kontakt bringt; (iii) ein drittes Kanalsegment gekoppelt an den ersten Knoten, das mindestens ein viertes Kanalsegment an einem zweiten Knoten schneidet, wobei das mindestens eine vierte Kanalsegment an eine Quelle eines Fluids gekoppelt ist, das mit dem ersten und zweiten wässrigen Fluid nicht mischbar ist, und wobei der zweite Knoten das erste und zweite wässrige Fluid zu Tröpfchen innerhalb des Fluids partitioniert; und (b) ein Stromkontrollsystem operativ gekoppelt mit dem mikrofluidischen Kanalnetzwerk, das das erste, zweite und dritte Fluid einem Strömen durch das mikrofluidische Kanalnetzwerk unterwirft, um Tröpfchen umfassend das erste und zweite wässrige Fluid in dem Fluid zu bilden, mit einer Frequenz von mindestens 50 Hz und die weniger als 20% variiert. wobei das mikrofluidische System weiterhin eine Mikrokapselstromregulierungskomponente umfasst, die eine Frequenz breitstellt, mit der die Mikrokapseln strömen, die einen Variationskoeffizienten von weniger als 50% aufweist.
  3. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei zumindest ein Kanalsegment des mikrofluidischen Kanalnetzwerks mit einem passiven Fluidventil bereitgestellt ist.
  4. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Mikrokapselstromregulierungskomponente eine Frequenz breitstellt, mit der die Mikrokapseln strömen, die einen Variationskoeffizienten von weniger als 30%, bevorzugt weniger als 20%, noch bevorzugter von weniger als 10 % und am meisten bevorzugt von weniger als 5 % aufweist.
  5. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das mikrofluidische System dazu eingerichtet ist, das wässrige Fluid einem Strömen in den Tröpfchenerzeugungsknoten zu unterwerfen um eine Population von Tröpfchen zu erzeugen, wobei eine Flussrate des wässrigen Fluids so ist, dass nicht mehr als 50% bevorzugt nicht mehr als 25% und noch bevorzugter nicht mehr als 10 % der Tröpfchen der Population von Tröpfchen unbesetzt sind mit einer Mikrokapsel aus der Suspension von Mikrokapseln.
  6. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das mikrofluidische System dazu eingerichtet ist, das wässrige Fluid einem Strömen in den Tröpfchenerzeugungsknoten zu unterwerfen um eine Population von Tröpfchen zu erzeugen, wobei weniger als 25%, bevorzugt weniger als 20%, noch bevorzugter weniger als 15%, sogar noch bevorzugter weniger als 10% und am bevorzugtesten weniger als 5% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen mehr als eine Mikrokapsel umfassen.
  7. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das mikrofluidische System dazu eingerichtet ist, das wässrige Fluid einem Strömen in den Tröpfchenerzeugungsknoten zu unterwerfen um eine Population von Tröpfchen zu erzeugen, wobei mindestens 80%, bevorzugt mindestens 90% und besonders bevorzugt mindestens 95% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen eine einzelne Mikrokapsel umfassen.
  8. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei der Tröpfchenerzeugungsknoten in einem mikrofluidischen Kanalnetzwerk einer mikrofluidischen Vorrichtung liegt.
  9. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das mikrofluidische System dazu eingerichtet ist, einen oder mehrere Druckunterschiede über das erste und zweite Kanalsegment bereitzustellen, um eine gewünschte Flussrate bereitzustellen.
  10. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das erste und/oder zweite Kanalsegment Querschnittsdimensionen hat, die die Flussrate so bereitstellen, dass nicht mehr als 50% der Tröpfchen der Population von Tröpfchen unbesetzt sind mit einer Mikrokapsel aus der Suspension von Mikrokapseln.
  11. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das mikrofluidische Kanalnetzwerk weiterhin eine oder mehr Stromkontrollstrukturen innerhalb des ersten Kanalsegments umfasst, die eine gewünschte Flussrate bereitstellen.
  12. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei die Frequenz größer als 50 Hz, bevorzugt größer als 500 Hz und besonders bevorzugt größer 1000 Hz ist.
  13. Das mikrofluidische System nach einem der vorhergehenden Ansprüche, wobei das wässrige Fluid auch ein biologisches Molekül umfasst, wobei das biologische Molekül in den Gelmikrokapseln mitgezogen wird.
DE202015009609.3U 2014-04-10 2015-04-09 Mikrofluidisches System zur Erzeugung von Emulsionen Active DE202015009609U1 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201461977804P 2014-04-10 2014-04-10
US61/977,804 2014-04-10

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DE202015009609U1 true DE202015009609U1 (de) 2018-08-06

Family

ID=54264868

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE202015009494.5U Active DE202015009494U1 (de) 2014-04-10 2015-04-09 Fluidische Vorrichtungen und Systeme zur Einkapselung und Partitionierung von Reagenzien, und deren Anwendungen
DE202015009609.3U Active DE202015009609U1 (de) 2014-04-10 2015-04-09 Mikrofluidisches System zur Erzeugung von Emulsionen

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE202015009494.5U Active DE202015009494U1 (de) 2014-04-10 2015-04-09 Fluidische Vorrichtungen und Systeme zur Einkapselung und Partitionierung von Reagenzien, und deren Anwendungen

Country Status (12)

Country Link
US (7) US9694361B2 (de)
EP (2) EP4219010A1 (de)
JP (1) JP6726659B2 (de)
KR (1) KR102596508B1 (de)
CN (3) CN114534806B (de)
AU (3) AU2015243445B2 (de)
BR (1) BR112016023625A2 (de)
CA (1) CA2943624A1 (de)
DE (2) DE202015009494U1 (de)
IL (1) IL247934B (de)
MX (1) MX2016013156A (de)
WO (1) WO2015157567A1 (de)

Families Citing this family (203)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10787701B2 (en) 2010-04-05 2020-09-29 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially encoded biological assays
US20190300945A1 (en) 2010-04-05 2019-10-03 Prognosys Biosciences, Inc. Spatially Encoded Biological Assays
GB201106254D0 (en) 2011-04-13 2011-05-25 Frisen Jonas Method and product
LT3305918T (lt) 2012-03-05 2020-09-25 President And Fellows Of Harvard College Būdai, skirti epigenetinių sekų sudarymui
WO2013177560A1 (en) 2012-05-25 2013-11-28 The Regents Of The University Of California Microfluidic systems for particle trapping and separation
US10221442B2 (en) 2012-08-14 2019-03-05 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US9951386B2 (en) 2014-06-26 2018-04-24 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
AU2013302756C1 (en) 2012-08-14 2018-05-17 10X Genomics, Inc. Microcapsule compositions and methods
US10323279B2 (en) 2012-08-14 2019-06-18 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10752949B2 (en) 2012-08-14 2020-08-25 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10273541B2 (en) 2012-08-14 2019-04-30 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US11591637B2 (en) 2012-08-14 2023-02-28 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10400280B2 (en) 2012-08-14 2019-09-03 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9701998B2 (en) 2012-12-14 2017-07-11 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10533221B2 (en) 2012-12-14 2020-01-14 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
EP3567116A1 (de) 2012-12-14 2019-11-13 10X Genomics, Inc. Verfahren und systeme zur verarbeitung von polynukleotiden
KR102190198B1 (ko) 2013-02-08 2020-12-14 10엑스 제노믹스, 인크. 폴리뉴클레오티드 바코드 생성
WO2014210225A1 (en) 2013-06-25 2014-12-31 Prognosys Biosciences, Inc. Methods and systems for determining spatial patterns of biological targets in a sample
US10395758B2 (en) 2013-08-30 2019-08-27 10X Genomics, Inc. Sequencing methods
US9824068B2 (en) 2013-12-16 2017-11-21 10X Genomics, Inc. Methods and apparatus for sorting data
DE202015009494U1 (de) 2014-04-10 2018-02-08 10X Genomics, Inc. Fluidische Vorrichtungen und Systeme zur Einkapselung und Partitionierung von Reagenzien, und deren Anwendungen
US20150298091A1 (en) 2014-04-21 2015-10-22 President And Fellows Of Harvard College Systems and methods for barcoding nucleic acids
US11155809B2 (en) 2014-06-24 2021-10-26 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital PCR barcoding
MX2016016902A (es) 2014-06-26 2017-03-27 10X Genomics Inc Metodos para analizar acidos nucleicos de celulas individuales o poblaciones de celulas.
KR20170023979A (ko) 2014-06-26 2017-03-06 10엑스 제노믹스, 인크. 핵산 서열 조립을 위한 프로세스 및 시스템
CN107002128A (zh) 2014-10-29 2017-08-01 10X 基因组学有限公司 用于靶核酸测序的方法和组合物
US9975122B2 (en) 2014-11-05 2018-05-22 10X Genomics, Inc. Instrument systems for integrated sample processing
SG11201705615UA (en) 2015-01-12 2017-08-30 10X Genomics Inc Processes and systems for preparing nucleic acid sequencing libraries and libraries prepared using same
SG11201705425SA (en) 2015-01-13 2017-08-30 10X Genomics Inc Systems and methods for visualizing structural variation and phasing information
MX2017010142A (es) 2015-02-09 2017-12-11 10X Genomics Inc Sistemas y metodos para determinar variacion estructural y ajuste de fases con datos de recuperacion de variantes.
EP3262407B1 (de) 2015-02-24 2023-08-30 10X Genomics, Inc. Partitionsverarbeitungsverfahren und -systeme
AU2016222719B2 (en) 2015-02-24 2022-03-31 10X Genomics, Inc. Methods for targeted nucleic acid sequence coverage
EP3530752B1 (de) 2015-04-10 2021-03-24 Spatial Transcriptomics AB Räumlich getrennte multiplex-nukleinsäureanalyse von biologischen proben
US11746367B2 (en) 2015-04-17 2023-09-05 President And Fellows Of Harvard College Barcoding systems and methods for gene sequencing and other applications
EP3300516B1 (de) * 2015-05-20 2024-05-01 University of Maryland, College Park Erzeugung und erfassung von wässrigen tröpfchen in einem mikrofluidischen chip mit einer kontinuierlichen luftphase
WO2017015099A1 (en) 2015-07-17 2017-01-26 Nanostring Technologies, Inc. Simultaneous quantification of gene expression in a user-defined region of a cross-sectioned tissue
US11421270B2 (en) * 2015-08-25 2022-08-23 The Broad Institute, Inc. Screening of nucleic acid sequence variations via random loading of optically-encoded particles
US9862941B2 (en) 2015-10-14 2018-01-09 Pioneer Hi-Bred International, Inc. Single cell microfluidic device
US11371094B2 (en) 2015-11-19 2022-06-28 10X Genomics, Inc. Systems and methods for nucleic acid processing using degenerate nucleotides
DK3882357T3 (da) 2015-12-04 2022-08-29 10X Genomics Inc Fremgangsmåder og sammensætninger til analyse af nukleinsyrer
JP6735348B2 (ja) 2016-02-11 2020-08-05 10エックス ジェノミクス, インコーポレイテッド 全ゲノム配列データのデノボアセンブリのためのシステム、方法及び媒体
WO2017197343A2 (en) * 2016-05-12 2017-11-16 10X Genomics, Inc. Microfluidic on-chip filters
WO2017197338A1 (en) 2016-05-13 2017-11-16 10X Genomics, Inc. Microfluidic systems and methods of use
US11280766B2 (en) 2016-07-28 2022-03-22 Waters Technologies Corporation Encapsulated pre-analytic workflows for flow-through devices, liquid chromatography and mass spectrometric analysis
US10688494B2 (en) * 2016-08-23 2020-06-23 10X Genomics, Inc. Microfluidic surface-mediated emulsion stability control
EP3525933A1 (de) * 2016-10-11 2019-08-21 The Regents of the University of California Systeme und verfahren zur verkapselung und konservierung von organischem material zur analyse
GB201617869D0 (en) 2016-10-21 2016-12-07 Blacktrace Holdings Limited A microfluidic device
ES2870639T3 (es) 2016-10-24 2021-10-27 Geneinfosec Inc Ocultación de información presente en los ácidos nucleicos
US10815525B2 (en) 2016-12-22 2020-10-27 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10011872B1 (en) 2016-12-22 2018-07-03 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10550429B2 (en) 2016-12-22 2020-02-04 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
EP4029939B1 (de) 2017-01-30 2023-06-28 10X Genomics, Inc. Verfahren und systeme für eine einzelzellbarcodierung auf tröpfchenbasis
US10995333B2 (en) 2017-02-06 2021-05-04 10X Genomics, Inc. Systems and methods for nucleic acid preparation
EP3391958B1 (de) * 2017-04-19 2020-08-12 The Procter & Gamble Company Verfahren zur herstellung von oberflächenbeschichteten wasserabsorbierenden polymerpartikeln in einer mikrofluidischen vorrichtung
CN110637084A (zh) 2017-04-26 2019-12-31 10X基因组学有限公司 Mmlv逆转录酶变体
CN110945139B (zh) 2017-05-18 2023-09-05 10X基因组学有限公司 用于分选液滴和珠的方法和系统
US10544413B2 (en) 2017-05-18 2020-01-28 10X Genomics, Inc. Methods and systems for sorting droplets and beads
CN110870018A (zh) 2017-05-19 2020-03-06 10X基因组学有限公司 用于分析数据集的系统和方法
CN109526228B (zh) 2017-05-26 2022-11-25 10X基因组学有限公司 转座酶可接近性染色质的单细胞分析
US10844372B2 (en) 2017-05-26 2020-11-24 10X Genomics, Inc. Single cell analysis of transposase accessible chromatin
US10780438B2 (en) 2017-06-09 2020-09-22 The Regents Of The University Of California High-efficiency encapsulation in droplets based on hydrodynamic vortices control
US11517901B2 (en) 2017-06-09 2022-12-06 The Regents Of The University Of California High-efficiency particle encapsulation in droplets with particle spacing and downstream droplet sorting
CN110799679A (zh) 2017-06-20 2020-02-14 10X基因组学有限公司 用于改善液滴稳定的方法和系统
CA3067048C (en) * 2017-08-01 2024-03-05 Illumina, Inc. Hydrogel beads for nucleotide sequencing
US10549279B2 (en) 2017-08-22 2020-02-04 10X Genomics, Inc. Devices having a plurality of droplet formation regions
US10837047B2 (en) 2017-10-04 2020-11-17 10X Genomics, Inc. Compositions, methods, and systems for bead formation using improved polymers
US10590244B2 (en) 2017-10-04 2020-03-17 10X Genomics, Inc. Compositions, methods, and systems for bead formation using improved polymers
EP3691703A1 (de) 2017-10-04 2020-08-12 10X Genomics, Inc. Zusammensetzungen, verfahren und systeme zur perlenbildung unter verwendung verbesserter polymere
WO2019075409A1 (en) 2017-10-12 2019-04-18 The Regents Of The University Of California ISOLATION AND IDENTIFICATION WITHOUT MICROFLUIDIC LABEL OF CELLS USING FLUORESCENCE LIFE IMAGING (FLIM)
US11402400B2 (en) 2017-10-13 2022-08-02 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Partition liquid into samples
US11499127B2 (en) 2017-10-20 2022-11-15 The Regents Of The University Of California Multi-layered microfluidic systems for in vitro large-scale perfused capillary networks
WO2019079787A1 (en) 2017-10-20 2019-04-25 The Regents Of The University Of California MICROFLUIDIC SYSTEMS AND METHODS FOR CELL TRANSFECTION VIA LIPOFLEX
TWI651074B (zh) * 2017-10-25 2019-02-21 台達電子工業股份有限公司 粒子凝集混合方法及混合設備
WO2019083852A1 (en) 2017-10-26 2019-05-02 10X Genomics, Inc. MICROFLUIDIC CHANNEL NETWORKS FOR PARTITIONING
WO2019084328A1 (en) 2017-10-26 2019-05-02 10X Genomics, Inc. METHODS FOR PREPARING NUCLEIC ACID MOLECULES
WO2019084043A1 (en) 2017-10-26 2019-05-02 10X Genomics, Inc. METHODS AND SYSTEMS FOR NUCLEIC ACID PREPARATION AND CHROMATIN ANALYSIS
EP3700672B1 (de) 2017-10-27 2022-12-28 10X Genomics, Inc. Verfahren zur probenvorbereitung und -analyse
EP3625361A1 (de) 2017-11-15 2020-03-25 10X Genomics, Inc. Funktionalisierte gelperlen
US10829815B2 (en) 2017-11-17 2020-11-10 10X Genomics, Inc. Methods and systems for associating physical and genetic properties of biological particles
WO2019099908A1 (en) 2017-11-17 2019-05-23 10X Genomics, Inc. Methods and systems for associating physical and genetic properties of biological particles
WO2019108851A1 (en) 2017-11-30 2019-06-06 10X Genomics, Inc. Systems and methods for nucleic acid preparation and analysis
US11779923B2 (en) * 2017-12-06 2023-10-10 Samplix Aps Microfluidic device and a method for provision of double emulsion droplets
WO2019113235A1 (en) 2017-12-06 2019-06-13 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing nucleic acid molecules
CN114807306A (zh) 2017-12-08 2022-07-29 10X基因组学有限公司 用于标记细胞的方法和组合物
WO2019118355A1 (en) 2017-12-12 2019-06-20 10X Genomics, Inc. Systems and methods for single cell processing
WO2019126789A1 (en) 2017-12-22 2019-06-27 10X Genomics, Inc. Systems and methods for processing nucleic acid molecules from one or more cells
JP2021509024A (ja) 2018-01-02 2021-03-18 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ ミシガン 多数の液滴の捕捉
WO2019148042A1 (en) 2018-01-26 2019-08-01 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20210213413A1 (en) 2018-02-05 2021-07-15 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Systems and methods for multiplexed measurements in single and ensemble cells
WO2019157529A1 (en) 2018-02-12 2019-08-15 10X Genomics, Inc. Methods characterizing multiple analytes from individual cells or cell populations
JP7372927B6 (ja) 2018-02-12 2023-11-27 ナノストリング テクノロジーズ,インコーポレイティド 遺伝子およびタンパク質の発現を検出する生体分子プローブおよびその検出方法
US11639928B2 (en) 2018-02-22 2023-05-02 10X Genomics, Inc. Methods and systems for characterizing analytes from individual cells or cell populations
SG11202008080RA (en) 2018-02-22 2020-09-29 10X Genomics Inc Ligation mediated analysis of nucleic acids
WO2019169028A1 (en) 2018-02-28 2019-09-06 10X Genomics, Inc. Transcriptome sequencing through random ligation
WO2019191321A1 (en) 2018-03-28 2019-10-03 10X Genomics, Inc. Nucleic acid enrichment within partitions
EP3775271A1 (de) 2018-04-06 2021-02-17 10X Genomics, Inc. Systeme und verfahren zur qualitätskontrolle in einer einzelzellenverarbeitung
WO2019209374A1 (en) * 2018-04-24 2019-10-31 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Sequenced droplet ejection to deliver fluids
US11925932B2 (en) 2018-04-24 2024-03-12 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Microfluidic devices
WO2020018074A1 (en) 2018-07-17 2020-01-23 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Droplet ejectors to provide fluids to droplet ejectors
WO2019217758A1 (en) 2018-05-10 2019-11-14 10X Genomics, Inc. Methods and systems for molecular library generation
US11932899B2 (en) 2018-06-07 2024-03-19 10X Genomics, Inc. Methods and systems for characterizing nucleic acid molecules
US11703427B2 (en) 2018-06-25 2023-07-18 10X Genomics, Inc. Methods and systems for cell and bead processing
US11547993B2 (en) 2018-07-17 2023-01-10 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Droplet ejectors with target media
US20200032335A1 (en) 2018-07-27 2020-01-30 10X Genomics, Inc. Systems and methods for metabolome analysis
US20200263232A1 (en) 2018-08-03 2020-08-20 10X Genomics, Inc. Methods and systems to minimize barcode exchange
WO2020041148A1 (en) 2018-08-20 2020-02-27 10X Genomics, Inc. Methods and systems for detection of protein-dna interactions using proximity ligation
CN109289950A (zh) * 2018-10-19 2019-02-01 扬州大学 一种多孔微球的制备装置及方法
US11459607B1 (en) 2018-12-10 2022-10-04 10X Genomics, Inc. Systems and methods for processing-nucleic acid molecules from a single cell using sequential co-partitioning and composite barcodes
WO2020123657A2 (en) 2018-12-11 2020-06-18 10X Genomics, Inc. Methods and devices for detecting and sorting droplets or particles
WO2020139844A1 (en) 2018-12-24 2020-07-02 10X Genomics, Inc. Devices, systems, and methods for controlling liquid flow
US11649485B2 (en) 2019-01-06 2023-05-16 10X Genomics, Inc. Generating capture probes for spatial analysis
EP3906318A1 (de) 2019-01-06 2021-11-10 10X Genomics, Inc. Verfahren und systeme zur anreicherung von barcodes
US11926867B2 (en) 2019-01-06 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Generating capture probes for spatial analysis
US11845983B1 (en) 2019-01-09 2023-12-19 10X Genomics, Inc. Methods and systems for multiplexing of droplet based assays
EP3917654A1 (de) * 2019-01-31 2021-12-08 Samplix ApS Mikrofluidische vorrichtung und verfahren zur bereitstellung von doppelemulsionströpfchen
KR20210138017A (ko) 2019-02-11 2021-11-18 울티마 제노믹스, 인크. 핵산 분석 방법
CA3127279A1 (en) 2019-02-12 2020-08-20 Therycell Gmbh Reverse immunosuppression
WO2020167862A1 (en) 2019-02-12 2020-08-20 10X Genomics, Inc. Systems and methods for transfer of reagents between droplets
WO2020168013A1 (en) 2019-02-12 2020-08-20 10X Genomics, Inc. Methods for processing nucleic acid molecules
WO2020167866A1 (en) 2019-02-12 2020-08-20 10X Genomics, Inc. Systems and methods for transposon loading
US11851683B1 (en) 2019-02-12 2023-12-26 10X Genomics, Inc. Methods and systems for selective analysis of cellular samples
US11467153B2 (en) 2019-02-12 2022-10-11 10X Genomics, Inc. Methods for processing nucleic acid molecules
US11655499B1 (en) 2019-02-25 2023-05-23 10X Genomics, Inc. Detection of sequence elements in nucleic acid molecules
WO2020176882A1 (en) 2019-02-28 2020-09-03 10X Genomics, Inc. Devices, systems, and methods for increasing droplet formation efficiency
US11920183B2 (en) 2019-03-11 2024-03-05 10X Genomics, Inc. Systems and methods for processing optically tagged beads
SG11202110592QA (en) 2019-03-27 2021-10-28 10X Genomics Inc Systems and methods for processing rna from cells
CN113874423A (zh) 2019-04-03 2021-12-31 10X基因组学有限公司 用于使用改进的聚合物形成珠粒的组合物、方法和系统
EP3962652A4 (de) * 2019-04-30 2023-01-18 Berkeley Lights, Inc. Verfahren zum einkapseln und testen von zellen
WO2020243579A1 (en) 2019-05-30 2020-12-03 10X Genomics, Inc. Methods of detecting spatial heterogeneity of a biological sample
EP4017638A4 (de) * 2019-08-20 2023-08-16 Pattern Bioscience, Inc. Mikrofluidische chips mit einer rinne zur erleichterung ihrer beladung und zugehörige verfahren
US11919002B2 (en) 2019-08-20 2024-03-05 10X Genomics, Inc. Devices and methods for generating and recovering droplets
EP4025709A1 (de) 2019-09-06 2022-07-13 10X Genomics, Inc. Systeme und verfahren zum barcodieren von zellen und zellwulsten
WO2021072306A1 (en) * 2019-10-10 2021-04-15 1859, Inc. Methods and systems for microfluidic screening
WO2021072314A1 (en) 2019-10-11 2021-04-15 10X Genomics, Inc. Methods for analyte detection and analysis
WO2021091611A1 (en) 2019-11-08 2021-05-14 10X Genomics, Inc. Spatially-tagged analyte capture agents for analyte multiplexing
EP4025711A2 (de) 2019-11-08 2022-07-13 10X Genomics, Inc. Erhöhung der spezifität einer analytbindung
EP4065280A1 (de) 2019-11-27 2022-10-05 10X Genomics, Inc. Vorrichtungen, systeme und verfahren zur tropfenerzeugung
CN112844259B (zh) * 2019-11-28 2022-09-16 中国科学院大连化学物理研究所 一种基于双水相的双液核水凝胶微囊制备方法
CN112852705A (zh) * 2019-11-28 2021-05-28 中国科学院大连化学物理研究所 一种用于单细胞配对的双液核水凝胶微囊制备方法
AU2020400056A1 (en) 2019-12-12 2022-07-07 President And Fellows Of Harvard College Compositions and methods for light-directed biomolecular barcoding
WO2021133842A1 (en) 2019-12-23 2021-07-01 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for using fixed biological samples in partition-based assays
EP3891300B1 (de) 2019-12-23 2023-03-29 10X Genomics, Inc. Verfahren zur räumlichen analyse mittels rna-template-ligation
WO2021133845A1 (en) 2019-12-23 2021-07-01 10X Genomics, Inc. Reversible fixing reagents and methods of use thereof
US11732299B2 (en) 2020-01-21 2023-08-22 10X Genomics, Inc. Spatial assays with perturbed cells
US11702693B2 (en) 2020-01-21 2023-07-18 10X Genomics, Inc. Methods for printing cells and generating arrays of barcoded cells
US11821035B1 (en) 2020-01-29 2023-11-21 10X Genomics, Inc. Compositions and methods of making gene expression libraries
US11898205B2 (en) 2020-02-03 2024-02-13 10X Genomics, Inc. Increasing capture efficiency of spatial assays
US11732300B2 (en) 2020-02-05 2023-08-22 10X Genomics, Inc. Increasing efficiency of spatial analysis in a biological sample
US11835462B2 (en) 2020-02-11 2023-12-05 10X Genomics, Inc. Methods and compositions for partitioning a biological sample
AU2021221158A1 (en) 2020-02-13 2022-09-22 10X Genomics, Inc. Methods for characterizing cells using gene expression and chromatin accessibility
US11891654B2 (en) 2020-02-24 2024-02-06 10X Genomics, Inc. Methods of making gene expression libraries
US11926863B1 (en) 2020-02-27 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Solid state single cell method for analyzing fixed biological cells
US20210270703A1 (en) 2020-02-28 2021-09-02 10X Genomics, Inc. Method for isolating nuclei and cells from tissues
US11768175B1 (en) 2020-03-04 2023-09-26 10X Genomics, Inc. Electrophoretic methods for spatial analysis
WO2021207610A1 (en) 2020-04-10 2021-10-14 10X Genomics, Inc. Cold protease treatment method for preparing biological samples
EP4136227A1 (de) 2020-04-16 2023-02-22 10X Genomics, Inc. Zusammensetzungen und verfahren zur verwendung mit fixierten proben
WO2021216708A1 (en) 2020-04-22 2021-10-28 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using targeted rna depletion
WO2021222301A1 (en) 2020-04-27 2021-11-04 10X Genomics, Inc. Methods and systems for analysis and identification of barcode multiplets
WO2021222302A1 (en) 2020-04-27 2021-11-04 10X Genomics, Inc. Methods and systems for increasing cell recovery efficiency
US11851700B1 (en) 2020-05-13 2023-12-26 10X Genomics, Inc. Methods, kits, and compositions for processing extracellular molecules
WO2021236929A1 (en) 2020-05-22 2021-11-25 10X Genomics, Inc. Simultaneous spatio-temporal measurement of gene expression and cellular activity
WO2021237087A1 (en) 2020-05-22 2021-11-25 10X Genomics, Inc. Spatial analysis to detect sequence variants
AU2021283174A1 (en) 2020-06-02 2023-01-05 10X Genomics, Inc. Nucleic acid library methods
WO2021247618A1 (en) 2020-06-02 2021-12-09 10X Genomics, Inc. Enrichment of nucleic acid sequences
WO2021247568A1 (en) 2020-06-02 2021-12-09 10X Genomics, Inc. Spatial trancriptomics for antigen-receptors
CN116234926A (zh) 2020-06-03 2023-06-06 中国海洋大学 分析来自细胞的目标核酸的方法
EP4162074B1 (de) 2020-06-08 2024-04-24 10X Genomics, Inc. Verfahren zur bestimmung eines chirurgischen randes und verfahren zur verwendung davon
CN116034166A (zh) 2020-06-25 2023-04-28 10X基因组学有限公司 Dna甲基化的空间分析
EP4176437A1 (de) 2020-07-02 2023-05-10 10X Genomics, Inc. Systeme und verfahren zur erkennung von molekularen barcodes mit geringer häufigkeit aus einer sequenzierungsbibliothek
WO2022006443A1 (en) 2020-07-02 2022-01-06 10X Genomics, Inc. Systems and methods for detecting cell-associated barcodes from single-cell partitions
US11761038B1 (en) 2020-07-06 2023-09-19 10X Genomics, Inc. Methods for identifying a location of an RNA in a biological sample
CN116367913A (zh) 2020-09-02 2023-06-30 10X基因组学有限公司 用于高通量液滴形成的流动聚焦装置、系统和方法
CN116171200A (zh) 2020-09-02 2023-05-26 10X基因组学有限公司 用于高通量液滴形成的装置、系统和方法
US11926822B1 (en) 2020-09-23 2024-03-12 10X Genomics, Inc. Three-dimensional spatial analysis
WO2022066760A1 (en) 2020-09-23 2022-03-31 10X Genomics, Inc. Selective enzymatic gelation
CN116964219A (zh) 2020-10-09 2023-10-27 10X基因组学有限公司 用于分析抗原结合分子的方法和组合物
WO2022076914A1 (en) 2020-10-09 2022-04-14 10X Genomics, Inc. Methods and compositions for profiling immune repertoire
WO2022081643A2 (en) 2020-10-13 2022-04-21 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for generating recombinant antigen binding molecules from single cells
WO2022103712A1 (en) 2020-11-13 2022-05-19 10X Genomics, Inc. Nano-partitions (encapsulated nucleic acid processing enzymes) for cell-lysis and multiple reactions in partition-based assays
US11827935B1 (en) 2020-11-19 2023-11-28 10X Genomics, Inc. Methods for spatial analysis using rolling circle amplification and detection probes
AU2021409136A1 (en) 2020-12-21 2023-06-29 10X Genomics, Inc. Methods, compositions, and systems for capturing probes and/or barcodes
EP4275051A1 (de) 2021-01-08 2023-11-15 10X Genomics, Inc. Verfahren zur erzeugung antigenbindender moleküle aus einzelzellen
CN116917042A (zh) 2021-01-19 2023-10-20 10X基因组学有限公司 温度控制方法和装置
WO2022178304A1 (en) 2021-02-19 2022-08-25 10X Genomics, Inc. High-throughput methods for analyzing and affinity-maturing an antigen-binding molecule
WO2022182664A1 (en) 2021-02-23 2022-09-01 10X Genomics, Inc. A method for epitope binning of novel monoclonal antibodies
WO2022182682A1 (en) 2021-02-23 2022-09-01 10X Genomics, Inc. Probe-based analysis of nucleic acids and proteins
WO2022182785A1 (en) 2021-02-23 2022-09-01 10X Genomics, Inc. Drug screening methods
WO2022182662A1 (en) 2021-02-23 2022-09-01 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for mapping antigen-binding molecule affinity to antigen regions of interest
CN117098607A (zh) 2021-02-24 2023-11-21 10X基因组学有限公司 用于浓缩乳液中的液滴的方法
EP4301870A1 (de) 2021-03-18 2024-01-10 10X Genomics, Inc. Multiplex-erfassung von gen- und proteinexpression aus einer biologischen probe
EP4313412A1 (de) 2021-03-26 2024-02-07 10X Genomics, Inc. Vorrichtungen, verfahren und systeme zur verbesserten tröpfchenrückgewinnung
WO2022221428A1 (en) 2021-04-14 2022-10-20 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for single cell analyte detection and analysis
WO2022256345A1 (en) 2021-06-01 2022-12-08 10X Genomics, Inc. Methods and systems for engineering antibodies, and antigen-binding fragments thereof, to have altered characteristics
WO2022256313A1 (en) 2021-06-01 2022-12-08 10X Genomics, Inc. Validation of a unique molecular identifier associated with a nucleic acid sequence of interest
WO2022271908A1 (en) 2021-06-23 2022-12-29 10X Genomics, Inc. Chop-fix method and chopping device for preparing biological samples
EP4196605A1 (de) 2021-09-01 2023-06-21 10X Genomics, Inc. Verfahren, zusammensetzungen und kits zur blockierung einer erfassungssonde auf einer räumlichen anordnung
WO2023060110A1 (en) 2021-10-05 2023-04-13 10X Genomics, Inc. Methods of immune cell analysis
WO2023059646A1 (en) 2021-10-06 2023-04-13 10X Genomics, Inc. Systems and methods for evaluating biological samples
WO2023114310A1 (en) 2021-12-15 2023-06-22 10X Genomics, Inc. Methods for improving sensitivity of immune profiling using oligo-tagged antigens
WO2023168423A1 (en) 2022-03-04 2023-09-07 10X Genomics, Inc. Droplet forming devices and methods having fluoropolymer silane coating agents
WO2023212532A1 (en) 2022-04-26 2023-11-02 10X Genomics, Inc. Systems and methods for evaluating biological samples
WO2024006392A1 (en) 2022-06-29 2024-01-04 10X Genomics, Inc. Probe-based analysis of nucleic acids and proteins
WO2024039763A2 (en) 2022-08-18 2024-02-22 10X Genomics, Inc. Droplet forming devices and methods having flourous diol additives

Family Cites Families (635)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US1007137A (en) 1908-06-08 1911-10-31 Theodore D Palmer Cloth-pressing machine.
US1004111A (en) 1908-10-17 1911-09-26 Westinghouse Air Brake Co Fluid-pressure brake.
US1001187A (en) 1910-11-21 1911-08-22 Sidney O Bigney Fob.
US1013744A (en) 1911-01-30 1912-01-02 Albert W Griffith Shoe.
US1015096A (en) 1911-03-14 1912-01-16 Laroy E Tait Spark-indicator.
US1003026A (en) 1911-04-12 1911-09-12 Bernard Bartmann Bobbin-holder.
US1005998A (en) 1911-07-10 1911-10-17 Arthur Munchausen Berry-carrier.
US1015011A (en) 1911-07-26 1912-01-16 Reece Button Hole Machine Co Buttonhole-machine.
US1005372A (en) 1911-08-11 1911-10-10 Albert Gay Plow-fender.
US1015099A (en) 1911-09-06 1912-01-16 Frank Trojan Hat-pin-point protector.
US2797149A (en) 1953-01-08 1957-06-25 Technicon International Ltd Methods of and apparatus for analyzing liquids containing crystalloid and non-crystalloid constituents
BE590880A (de) 1959-06-01
US3047367A (en) 1959-12-01 1962-07-31 Technicon Instr Automatic analysis with fluid segmentation
US3479141A (en) 1967-05-17 1969-11-18 Technicon Corp Method and apparatus for analysis
US4124638A (en) 1977-09-12 1978-11-07 Hansen John N Solubilizable polyacrylamide gels containing disulfide cross-linkages
US4253846A (en) 1979-11-21 1981-03-03 Technicon Instruments Corporation Method and apparatus for automated analysis of fluid samples
GB2097692B (en) 1981-01-10 1985-05-22 Shaw Stewart P D Combining chemical reagents
DE3230289A1 (de) 1982-08-14 1984-02-16 Bayer Ag, 5090 Leverkusen Herstellung von pharmazeutischen oder kosmetischen dispersionen
US4582802A (en) 1983-09-30 1986-04-15 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Stimulation of enzymatic ligation of DNA by high concentrations of nonspecific polymers
JPS60227826A (ja) 1984-04-27 1985-11-13 Sogo Yatsukou Kk pHに応答するグラフトカプセル
US4916070A (en) 1986-04-14 1990-04-10 The General Hospital Corporation Fibrin-specific antibodies and method of screening for the antibodies
US5618711A (en) 1986-08-22 1997-04-08 Hoffmann-La Roche Inc. Recombinant expression vectors and purification methods for Thermus thermophilus DNA polymerase
US4872895A (en) 1986-12-11 1989-10-10 American Telephone And Telegraph Company, At&T Bell Laboratories Method for fabricating articles which include high silica glass bodies
US5525464A (en) 1987-04-01 1996-06-11 Hyseq, Inc. Method of sequencing by hybridization of oligonucleotide probes
US5202231A (en) 1987-04-01 1993-04-13 Drmanac Radoje T Method of sequencing of genomes by hybridization of oligonucleotide probes
US5149625A (en) 1987-08-11 1992-09-22 President And Fellows Of Harvard College Multiplex analysis of DNA
US5137829A (en) 1987-10-05 1992-08-11 Washington University DNA transposon TN5SEQ1
US5185099A (en) 1988-04-20 1993-02-09 Institut National De Recherche Chimique Appliquee Visco-elastic, isotropic materials based on water, fluorinate sufactants and fluorinated oils, process for their preparation, and their use in various fields, such as optics, pharmacology and electrodynamics
US5237016A (en) 1989-01-05 1993-08-17 Siska Diagnostics, Inc. End-attachment of oligonucleotides to polyacrylamide solid supports for capture and detection of nucleic acids
US5756334A (en) 1990-04-26 1998-05-26 New England Biolabs, Inc. Thermostable DNA polymerase from 9°N-7 and methods for producing the same
WO1992001814A2 (en) 1990-07-24 1992-02-06 F. Hoffmann-La-Roche Ag The reduction of non-specific amplification during in vitro nucleic acid amplification using modified nucleic acid bases
US5489523A (en) 1990-12-03 1996-02-06 Stratagene Exonuclease-deficient thermostable Pyrococcus furiosus DNA polymerase I
US6582908B2 (en) 1990-12-06 2003-06-24 Affymetrix, Inc. Oligonucleotides
US5270183A (en) 1991-02-08 1993-12-14 Beckman Research Institute Of The City Of Hope Device and method for the automated cycling of solutions between two or more temperatures
US5994056A (en) 1991-05-02 1999-11-30 Roche Molecular Systems, Inc. Homogeneous methods for nucleic acid amplification and detection
EP0594772B1 (de) 1991-07-04 1996-08-28 Immunodex K/S Wasserlösliche reagenzien und konjugate auf polymerbasis, die vom divinylsulfon abgeleitete reste enthalten
JPH06509473A (ja) 1991-08-10 1994-10-27 メディカル・リサーチ・カウンシル 細胞個体群の処理
DK0604552T3 (da) 1991-09-18 1997-08-04 Affymax Tech Nv Fremgangsmåde til syntese af forskellige samlinger af oligomerer
US5413924A (en) 1992-02-13 1995-05-09 Kosak; Kenneth M. Preparation of wax beads containing a reagent for release by heating
WO1993019205A1 (en) 1992-03-19 1993-09-30 The Regents Of The University Of California Multiple tag labeling method for dna sequencing
WO1993022058A1 (en) 1992-05-01 1993-11-11 Trustees Of The University Of Pennsylvania Polynucleotide amplification analysis using a microfabricated device
US5587128A (en) 1992-05-01 1996-12-24 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Mesoscale polynucleotide amplification devices
US5840865A (en) 1992-09-14 1998-11-24 Institute Of Molecular Biology And Biotechnology/Forth Eukaryotic transposable element
US5897783A (en) 1992-09-24 1999-04-27 Amersham International Plc Magnetic separation method
US5569364A (en) 1992-11-05 1996-10-29 Soane Biosciences, Inc. Separation media for electrophoresis
JPH08506664A (ja) 1993-02-01 1996-07-16 セック,リミテッド Dna配列決定の方法および装置
AU6175594A (en) 1993-02-16 1994-09-14 Alliance Pharmaceutical Corporation Method of microemulsifying fluorinated oils
GB2277118B (en) 1993-04-16 1996-01-03 William Edmund Carroll Tool
AU6637394A (en) 1993-04-19 1994-11-08 Medisorb Technologies International L.P. Long-acting treatment by slow-release delivery of antisense oligodeoxyribonucleotides from biodegradable microparticles
ATE208658T1 (de) 1993-07-28 2001-11-15 Pe Corp Ny Vorrichtung und verfahren zur nukleinsäurevervielfältigung
US5874239A (en) 1993-07-30 1999-02-23 Affymax Technologies N.V. Biotinylation of proteins
WO1995006652A1 (en) 1993-08-30 1995-03-09 Promega Corporation Nucleic acid purification compositions and methods
US5512131A (en) 1993-10-04 1996-04-30 President And Fellows Of Harvard College Formation of microstamped patterns on surfaces and derivative articles
US20030044777A1 (en) 1993-10-28 2003-03-06 Kenneth L. Beattie Flowthrough devices for multiple discrete binding reactions
US5605793A (en) 1994-02-17 1997-02-25 Affymax Technologies N.V. Methods for in vitro recombination
US5558071A (en) 1994-03-07 1996-09-24 Combustion Electromagnetics, Inc. Ignition system power converter and controller
US5648211A (en) 1994-04-18 1997-07-15 Becton, Dickinson And Company Strand displacement amplification using thermophilic enzymes
EP0775313B1 (de) 1994-05-11 2000-03-15 Genera Technologies Limited Verfahren zum Einfangen von einem Ligand aus einer Flüssigkeit und Vorrichtung zur dessen Ausführung
US5705628A (en) 1994-09-20 1998-01-06 Whitehead Institute For Biomedical Research DNA purification and isolation using magnetic particles
US5846719A (en) 1994-10-13 1998-12-08 Lynx Therapeutics, Inc. Oligonucleotide tags for sorting and identification
US5585069A (en) 1994-11-10 1996-12-17 David Sarnoff Research Center, Inc. Partitioned microelectronic and fluidic device array for clinical diagnostics and chemical synthesis
EP0812434B1 (de) 1995-03-01 2013-09-18 President and Fellows of Harvard College Oberflächenstrukturierung mittels mikrokontaktdruckverfahren, sowie damit erzeugte artikel
US5700642A (en) 1995-05-22 1997-12-23 Sri International Oligonucleotide sizing using immobilized cleavable primers
ATE466109T1 (de) 1995-06-07 2010-05-15 Solexa Inc Verfahren zur verbesserung der effizienz der polynukleotidsequenzierung
EP0832287B1 (de) 1995-06-07 2007-10-10 Solexa, Inc Oligonukleotid-tags zur sortierung und identifizierung
US5856174A (en) 1995-06-29 1999-01-05 Affymetrix, Inc. Integrated nucleic acid diagnostic device
US6866760B2 (en) 1998-08-27 2005-03-15 E Ink Corporation Electrophoretic medium and process for the production thereof
US5872010A (en) 1995-07-21 1999-02-16 Northeastern University Microscale fluid handling system
US6057149A (en) 1995-09-15 2000-05-02 The University Of Michigan Microscale devices and reactions in microscale devices
US5851769A (en) 1995-09-27 1998-12-22 The Regents Of The University Of California Quantitative DNA fiber mapping
US5736330A (en) 1995-10-11 1998-04-07 Luminex Corporation Method and compositions for flow cytometric determination of DNA sequences
US6051377A (en) 1995-11-30 2000-04-18 Pharmaseq, Inc. Multiplex assay for nucleic acids employing transponders
US6001571A (en) 1995-11-30 1999-12-14 Mandecki; Wlodek Multiplex assay for nucleic acids employing transponders
US5736332A (en) 1995-11-30 1998-04-07 Mandecki; Wlodek Method of determining the sequence of nucleic acids employing solid-phase particles carrying transponders
US6355198B1 (en) 1996-03-15 2002-03-12 President And Fellows Of Harvard College Method of forming articles including waveguides via capillary micromolding and microtransfer molding
EP0832436A1 (de) 1996-04-15 1998-04-01 Dade Behring Inc. Verfahren und vorrichtung zur analyse
US6399023B1 (en) 1996-04-16 2002-06-04 Caliper Technologies Corp. Analytical system and method
EP0912761A4 (de) 1996-05-29 2004-06-09 Cornell Res Foundation Inc Bestimmung von unterschieden in der nukleisäuresequenz mittels einer kombination von ligasebestimmung und polymerase-kettenreaktion
US5846727A (en) 1996-06-06 1998-12-08 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural & Mechanical College Microsystem for rapid DNA sequencing
AU4114397A (en) 1996-07-15 1998-02-09 Kemgas Limited Production of powders
US5965443A (en) 1996-09-09 1999-10-12 Wisconsin Alumni Research Foundation System for in vitro transposition
US5900481A (en) 1996-11-06 1999-05-04 Sequenom, Inc. Bead linkers for immobilizing nucleic acids to solid supports
US6133436A (en) 1996-11-06 2000-10-17 Sequenom, Inc. Beads bound to a solid support and to nucleic acids
US6379929B1 (en) 1996-11-20 2002-04-30 The Regents Of The University Of Michigan Chip-based isothermal amplification devices and methods
US5958703A (en) 1996-12-03 1999-09-28 Glaxo Group Limited Use of modified tethers in screening compound libraries
US20020172965A1 (en) 1996-12-13 2002-11-21 Arcaris, Inc. Methods for measuring relative amounts of nucleic acids in a complex mixture and retrieval of specific sequences therefrom
US20050042625A1 (en) 1997-01-15 2005-02-24 Xzillion Gmbh & Co. Mass label linked hybridisation probes
US6297006B1 (en) 1997-01-16 2001-10-02 Hyseq, Inc. Methods for sequencing repetitive sequences and for determining the order of sequence subfragments
US20020034737A1 (en) 1997-03-04 2002-03-21 Hyseq, Inc. Methods and compositions for detection or quantification of nucleic acid species
CA2281205A1 (en) 1997-02-12 1998-08-13 Eugene Y. Chan Methods and products for analyzing polymers
US7622294B2 (en) 1997-03-14 2009-11-24 Trustees Of Tufts College Methods for detecting target analytes and enzymatic reactions
US6327410B1 (en) 1997-03-14 2001-12-04 The Trustees Of Tufts College Target analyte sensors utilizing Microspheres
US20030027203A1 (en) 1997-03-24 2003-02-06 Fields Robert E. Biomolecular processor
US6391622B1 (en) 1997-04-04 2002-05-21 Caliper Technologies Corp. Closed-loop biochemical analyzers
US6143496A (en) 1997-04-17 2000-11-07 Cytonix Corporation Method of sampling, amplifying and quantifying segment of nucleic acid, polymerase chain reaction assembly having nanoliter-sized sample chambers, and method of filling assembly
DE69823347T2 (de) 1997-05-16 2005-05-12 Alberta Research Council, Edmonton Mikrofluidisches system und verfahren zu dessen betrieb
EP0985142A4 (de) 1997-05-23 2006-09-13 Lynx Therapeutics Inc System und gerät zur sequentiellen behandlung von analyten
US6969488B2 (en) 1998-05-22 2005-11-29 Solexa, Inc. System and apparatus for sequential processing of analytes
US20040241759A1 (en) 1997-06-16 2004-12-02 Eileen Tozer High throughput screening of libraries
ATE358177T1 (de) 1997-07-07 2007-04-15 Medical Res Council Ein in vitro sortierverfahren
GB9714716D0 (en) 1997-07-11 1997-09-17 Brax Genomics Ltd Characterising nucleic acids
FI103809B1 (fi) 1997-07-14 1999-09-30 Finnzymes Oy In vitro -menetelmä templaattien tuottamiseksi DNA-sekventointia varten
US6974669B2 (en) 2000-03-28 2005-12-13 Nanosphere, Inc. Bio-barcodes based on oligonucleotide-modified nanoparticles
US6368871B1 (en) 1997-08-13 2002-04-09 Cepheid Non-planar microstructures for manipulation of fluid samples
WO1999009217A1 (en) 1997-08-15 1999-02-25 Hyseq, Inc. Methods and compositions for detection or quantification of nucleic acid species
US5989402A (en) 1997-08-29 1999-11-23 Caliper Technologies Corp. Controller/detector interfaces for microfluidic systems
WO1999014368A2 (en) 1997-09-15 1999-03-25 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods and apparatus for processing a sample of biomolecular analyte using a microfabricated device
US20020092767A1 (en) 1997-09-19 2002-07-18 Aclara Biosciences, Inc. Multiple array microfluidic device units
US7214298B2 (en) 1997-09-23 2007-05-08 California Institute Of Technology Microfabricated cell sorter
EP1029244A4 (de) 1997-10-02 2003-07-23 Aclara Biosciences Inc Kapillarassay mit trennung freier und gebundener spezies
US5842787A (en) 1997-10-09 1998-12-01 Caliper Technologies Corporation Microfluidic systems incorporating varied channel dimensions
US6511803B1 (en) 1997-10-10 2003-01-28 President And Fellows Of Harvard College Replica amplification of nucleic acid arrays
US6485944B1 (en) 1997-10-10 2002-11-26 President And Fellows Of Harvard College Replica amplification of nucleic acid arrays
JP2001519538A (ja) 1997-10-10 2001-10-23 プレジデント・アンド・フェローズ・オブ・ハーバード・カレッジ 核酸アレイのレプリカ増幅
HUP0003986A3 (en) 1997-10-14 2001-04-28 Luminex Corp Austin Precision fluorescently dyed particles and methods of making and using same
JP2001521169A (ja) 1997-10-24 2001-11-06 ノースイースタン・ユニバーシティ 広範囲の採集と分析とで高スループットの調整分離のためのマルチチャンネルの微小規模システム
CA2313047A1 (en) 1997-12-04 1999-12-16 Nicholas Thomas Multiple assay method
WO1999033963A1 (en) 1997-12-31 1999-07-08 Chiron Corporation Metastatic cancer regulated gene
IL137706A0 (en) 1998-02-19 2001-10-31 Harvard College Mhc fusion proteins and conjugates
US7497994B2 (en) 1998-02-24 2009-03-03 Khushroo Gandhi Microfluidic devices and systems incorporating cover layers
US6207384B1 (en) 1998-03-27 2001-03-27 The General Hospital Corporation Systematic identification of essential genes by in vitro transposon mutagenesis
US6022716A (en) 1998-04-10 2000-02-08 Genset Sa High throughput DNA sequencing vector
AU3555599A (en) 1998-04-13 1999-11-01 Luminex Corporation Liquid labeling with fluorescent microparticles
US5997636A (en) 1998-05-01 1999-12-07 Instrumentation Technology Associates, Inc. Method and apparatus for growing crystals
US6780591B2 (en) 1998-05-01 2004-08-24 Arizona Board Of Regents Method of determining the nucleotide sequence of oligonucleotides and DNA molecules
US6534262B1 (en) 1998-05-14 2003-03-18 Whitehead Institute For Biomedical Research Solid phase technique for selectively isolating nucleic acids
US6306590B1 (en) 1998-06-08 2001-10-23 Caliper Technologies Corp. Microfluidic matrix localization apparatus and methods
US6586176B1 (en) 1998-08-07 2003-07-01 Cellay, Llc Gel microdrops in genetic analysis
JP3012608B1 (ja) 1998-09-17 2000-02-28 農林水産省食品総合研究所長 マイクロチャネル装置及び同装置を用いたエマルションの製造方法
US6159736A (en) 1998-09-23 2000-12-12 Wisconsin Alumni Research Foundation Method for making insertional mutations using a Tn5 synaptic complex
AR021833A1 (es) 1998-09-30 2002-08-07 Applied Research Systems Metodos de amplificacion y secuenciacion de acido nucleico
BR9914554A (pt) 1998-10-13 2001-06-26 Biomicro Systems Inc Componentes de circuito fluido com base em dinâmica dos fluidos passiva
US6489096B1 (en) 1998-10-15 2002-12-03 Princeton University Quantitative analysis of hybridization patterns and intensities in oligonucleotide arrays
SE9803614L (sv) 1998-10-19 2000-04-20 Muhammed Mamoun Förfarande och anordning för framställning av nanopartiklar
WO2000026412A1 (en) 1998-11-02 2000-05-11 Kenneth Loren Beattie Nucleic acid analysis using sequence-targeted tandem hybridization
US5942609A (en) 1998-11-12 1999-08-24 The Porkin-Elmer Corporation Ligation assembly and detection of polynucleotides on solid-support
US6569631B1 (en) 1998-11-12 2003-05-27 3-Dimensional Pharmaceuticals, Inc. Microplate thermal shift assay for ligand development using 5-(4″dimethylaminophenyl)-2-(4′-phenyl)oxazole derivative fluorescent dyes
NO986133D0 (no) 1998-12-23 1998-12-23 Preben Lexow FremgangsmÕte for DNA-sekvensering
GB9900298D0 (en) 1999-01-07 1999-02-24 Medical Res Council Optical sorting method
US6416642B1 (en) 1999-01-21 2002-07-09 Caliper Technologies Corp. Method and apparatus for continuous liquid flow in microscale channels using pressure injection, wicking, and electrokinetic injection
US6635419B1 (en) 1999-02-16 2003-10-21 Applera Corporation Polynucleotide sequencing method
US20030027214A1 (en) 1999-02-17 2003-02-06 Kamb Carl Alexander Methods for substrate-ligand interaction screening
AU3372800A (en) 1999-02-23 2000-09-14 Caliper Technologies Corporation Manipulation of microparticles in microfluidic systems
US6171850B1 (en) 1999-03-08 2001-01-09 Caliper Technologies Corp. Integrated devices and systems for performing temperature controlled reactions and analyses
US6303343B1 (en) 1999-04-06 2001-10-16 Caliper Technologies Corp. Inefficient fast PCR
US6908737B2 (en) 1999-04-15 2005-06-21 Vitra Bioscience, Inc. Systems and methods of conducting multiplexed experiments
US20060275782A1 (en) 1999-04-20 2006-12-07 Illumina, Inc. Detection of nucleic acid reactions on bead arrays
US6291243B1 (en) 1999-04-28 2001-09-18 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Jr. University P element derived vector and methods for its use
JP3815969B2 (ja) 1999-05-12 2006-08-30 アクララ バイオサイエンシーズ, インコーポレイテッド 微量流体デバイスにおける多重方式蛍光検出
WO2000070095A2 (en) 1999-05-17 2000-11-23 Dade Behring Inc. Homogeneous isothermal amplification and detection of nucleic acids using a template switch oligonucleotide
US20020051971A1 (en) 1999-05-21 2002-05-02 John R. Stuelpnagel Use of microfluidic systems in the detection of target analytes using microsphere arrays
US6846622B1 (en) 1999-05-26 2005-01-25 Oregon Health & Science University Tagged epitope protein transposable element
US20030124509A1 (en) 1999-06-03 2003-07-03 Kenis Paul J.A. Laminar flow patterning and articles made thereby
US6372813B1 (en) 1999-06-25 2002-04-16 Motorola Methods and compositions for attachment of biomolecules to solid supports, hydrogels, and hydrogel arrays
AU6068300A (en) 1999-07-06 2001-01-22 Caliper Technologies Corporation Microfluidic systems and methods for determining modulator kinetics
US6977145B2 (en) 1999-07-28 2005-12-20 Serono Genetics Institute S.A. Method for carrying out a biochemical protocol in continuous flow in a microreactor
US6524456B1 (en) 1999-08-12 2003-02-25 Ut-Battelle, Llc Microfluidic devices for the controlled manipulation of small volumes
WO2001013086A2 (en) 1999-08-13 2001-02-22 Brandeis University Detection of nucleic acids
AU6788100A (en) 1999-08-20 2001-03-19 Luminex Corporation Liquid array technology
ATE414171T1 (de) 1999-08-27 2008-11-15 Matrix Technologies Corp Verfahren zur immobilisierung von oligonukleotiden auf festem trägermaterial
US6982146B1 (en) 1999-08-30 2006-01-03 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services High speed parallel molecular nucleic acid sequencing
KR20020071853A (ko) 1999-10-13 2002-09-13 시그나츄어 바이오사이언스 인코포레이티드 테스트 샘플에서 분자 이벤트를 탐지 및 규명하는 시스템및 방법
US6958225B2 (en) 1999-10-27 2005-10-25 Affymetrix, Inc. Complexity management of genomic DNA
WO2001030965A2 (en) 1999-10-28 2001-05-03 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Methods of in vivo gene transfer using a sleeping beauty transposon system
JP4721603B2 (ja) 1999-11-08 2011-07-13 栄研化学株式会社 変異および/または多型の検出方法
US6432290B1 (en) 1999-11-26 2002-08-13 The Governors Of The University Of Alberta Apparatus and method for trapping bead based reagents within microfluidic analysis systems
AU2001249071B2 (en) 2000-02-23 2005-09-08 Caliper Life Sciences, Inc. Multi-reservoir pressure control system
CN1444646A (zh) 2000-02-23 2003-09-24 齐翁米克斯股份有限公司 具有凸起的样品表面的芯片
IL134830A0 (en) 2000-03-01 2001-05-20 Chay 13 Medical Res Group N V Peptides and immunostimulatory and anti-bacterial pharmaceutical compositions containing them
CA2402733A1 (en) 2000-03-14 2001-09-20 Burkhard Goke Effects of glucagon-like peptide-1 (7-36) on antro-pyloro-duodenal motility
CA2404008A1 (en) 2000-03-31 2001-10-11 Jurgen Sygusch Protein crystallization in microfluidic structures
AU2001250058A1 (en) 2000-04-06 2001-10-23 Caliper Technologies Corp. Methods and devices for achieving long incubation times in high-throughput systems
DK2206791T3 (en) 2000-04-10 2016-10-24 Taxon Biosciences Inc Methods of study and genetic analysis of populations
US6481453B1 (en) 2000-04-14 2002-11-19 Nanostream, Inc. Microfluidic branch metering systems and methods
US6800298B1 (en) 2000-05-11 2004-10-05 Clemson University Biological lubricant composition and method of applying lubricant composition
US20060008799A1 (en) 2000-05-22 2006-01-12 Hong Cai Rapid haplotyping by single molecule detection
WO2001090614A2 (en) 2000-05-24 2001-11-29 Micronics, Inc. Surface tension valves for microfluidic applications
US6645432B1 (en) 2000-05-25 2003-11-11 President & Fellows Of Harvard College Microfluidic systems including three-dimensionally arrayed channel networks
US20060263888A1 (en) 2000-06-02 2006-11-23 Honeywell International Inc. Differential white blood count on a disposable card
US6632606B1 (en) 2000-06-12 2003-10-14 Aclara Biosciences, Inc. Methods for single nucleotide polymorphism detection
JP4744778B2 (ja) 2000-06-21 2011-08-10 バイオアレイ ソルーションズ リミテッド 特定のランダム粒子アレイを適用した複数の被検体分子の分析方法
WO2002011888A2 (en) 2000-08-07 2002-02-14 Nanostream, Inc. Fluidic mixer in microfluidic system
US6610499B1 (en) 2000-08-31 2003-08-26 The Regents Of The University Of California Capillary array and related methods
US6773566B2 (en) 2000-08-31 2004-08-10 Nanolytics, Inc. Electrostatic actuators for microfluidics and methods for using same
EP1317569B1 (de) 2000-09-14 2009-11-18 Caliper Life Sciences, Inc. MIKROFLUIDISCHE VORRICHTUNGEN UND METHODEN UM TEMPERATUR-VERMITTELTE REAKTIONEN DURCHZUFüHREN
WO2002023163A1 (en) 2000-09-15 2002-03-21 California Institute Of Technology Microfabricated crossflow devices and methods
JP2005501217A (ja) 2000-10-10 2005-01-13 ディベルサ コーポレーション 生体活性または生体分子のハイスループットスクリーニングまたはキャピラリーに基づくスクリーニング
JP2002155305A (ja) 2000-11-14 2002-05-31 Akira Kawasaki 単分散粒子の製造装置及び単分散粒子の製造方法及びその製造方法で製造された単分散粒子
CA2332186A1 (en) 2001-02-08 2002-08-08 Her Majesty In Right Of Canada As Represented By The Minister Of Agricul Ture And Agri-Food Canada Replicative in vivo gene targeting
US7670559B2 (en) 2001-02-15 2010-03-02 Caliper Life Sciences, Inc. Microfluidic systems with enhanced detection systems
DE60207831D1 (de) 2001-02-22 2006-01-12 Anika Therapeutics Inc Thiol-modifizierte hyaluronan-derivate
US7268167B2 (en) 2001-02-23 2007-09-11 Japan Science And Technology Agency Process for producing emulsion and microcapsules and apparatus therefor
US20150329617A1 (en) 2001-03-14 2015-11-19 Dynal Biotech Asa Novel MHC molecule constructs, and methods of employing these constructs for diagnosis and therapy, and uses of MHC molecules
US7211654B2 (en) 2001-03-14 2007-05-01 Regents Of The University Of Michigan Linkers and co-coupling agents for optimization of oligonucleotide synthesis and purification on solid supports
WO2002081934A2 (en) 2001-04-03 2002-10-17 Micronics, Inc. Pneumatic valve interface for use in microfluidic structures
US7138267B1 (en) 2001-04-04 2006-11-21 Epicentre Technologies Corporation Methods and compositions for amplifying DNA clone copy number
US20030027221A1 (en) 2001-04-06 2003-02-06 Scott Melissa E. High-throughput screening assays by encapsulation
US7572642B2 (en) 2001-04-18 2009-08-11 Ambrigen, Llc Assay based on particles, which specifically bind with targets in spatially distributed characteristic patterns
KR20020089100A (ko) 2001-05-22 2002-11-29 박현영 냄새 제거 장치를 부착한 양변기(대,소변기) 제조 방법
JP4194934B2 (ja) 2001-05-26 2008-12-10 ワン セル システムズ インコーポレイテッド カプセル化細胞によるタンパク質の分泌法
US20020182118A1 (en) 2001-05-31 2002-12-05 Perry Brian A. Vacuum manifold for both multi-well plate and individual columns
US6880576B2 (en) 2001-06-07 2005-04-19 Nanostream, Inc. Microfluidic devices for methods development
US7179423B2 (en) 2001-06-20 2007-02-20 Cytonome, Inc. Microfluidic system including a virtual wall fluid interface port for interfacing fluids with the microfluidic system
US7682353B2 (en) 2001-06-29 2010-03-23 Coloplast A/S Catheter device
US6613523B2 (en) 2001-06-29 2003-09-02 Agilent Technologies, Inc. Method of DNA sequencing using cleavable tags
US7077152B2 (en) 2001-07-07 2006-07-18 Nanostream, Inc. Microfluidic metering systems and methods
US7799552B2 (en) 2001-07-20 2010-09-21 California Institute Of Technology Protein and nucleic acid expression systems
US6767731B2 (en) 2001-08-27 2004-07-27 Intel Corporation Electron induced fluorescent method for nucleic acid sequencing
US7297485B2 (en) 2001-10-15 2007-11-20 Qiagen Gmbh Method for nucleic acid amplification that results in low amplification bias
JP2005509872A (ja) 2001-10-19 2005-04-14 ウエスト バージニア ユニバーシティ リサーチ コーポレーション プロテオーム解析のための微小流体システム
US6783647B2 (en) 2001-10-19 2004-08-31 Ut-Battelle, Llc Microfluidic systems and methods of transport and lysis of cells and analysis of cell lysate
US20030149307A1 (en) 2001-10-24 2003-08-07 Baxter International Inc. Process for the preparation of polyethylene glycol bis amine
US20040195728A1 (en) 2001-10-26 2004-10-07 Dennis Slomski System and method for injection molded micro-replication of micro-fluidic substrates
CA2466164A1 (en) 2001-10-30 2003-05-08 Nanomics Biosystems Pty, Ltd. Device and methods for directed synthesis of chemical libraries
GB0127564D0 (en) 2001-11-16 2002-01-09 Medical Res Council Emulsion compositions
US6864480B2 (en) 2001-12-19 2005-03-08 Sau Lan Tang Staats Interface members and holders for microfluidic array devices
US7335153B2 (en) 2001-12-28 2008-02-26 Bio Array Solutions Ltd. Arrays of microparticles and methods of preparation thereof
US20030170698A1 (en) 2002-01-04 2003-09-11 Peter Gascoyne Droplet-based microfluidic oligonucleotide synthesis engine
US8110351B2 (en) 2002-01-16 2012-02-07 Invitrogen Dynal As Method for isolating nucleic acids and protein from a single sample
KR100459870B1 (ko) 2002-02-22 2004-12-04 한국과학기술원 트랜스포존과 Cre/loxP 부위 특이적 재조합 방법을 이용하는 염색체의 특정부위가 제거된 미생물 변이주 제조방법
AU2003226679A1 (en) 2002-03-20 2003-09-29 Innovativebio.Biz Microcapsules with controlable permeability encapsulating a nucleic acid amplification reaction mixture and their use as reaction compartments for parallels reactions
US7901939B2 (en) 2002-05-09 2011-03-08 University Of Chicago Method for performing crystallization and reactions in pressure-driven fluid plugs
JP4855680B2 (ja) 2002-05-09 2012-01-18 ザ・ユニバーシティ・オブ・シカゴ 圧力駆動プラグによる輸送と反応のための装置および方法
US7527966B2 (en) 2002-06-26 2009-05-05 Transgenrx, Inc. Gene regulation in transgenic animals using a transposon-based vector
JP2006507921A (ja) 2002-06-28 2006-03-09 プレジデント・アンド・フェロウズ・オブ・ハーバード・カレッジ 流体分散のための方法および装置
EP1543157A4 (de) 2002-07-24 2006-11-15 Ptc Therapeutics Inc VERFAHREN ZUR IDENTIFIZIERUNG KLEINER, DIE VORZEITIGE TRANSLATIONSTERMINATION UND DEN NONSENSE-VERMITTELTEN mRNA-ABBAU MODULIERENDER MOLEKÜLE
IL151660A0 (en) 2002-09-09 2003-04-10 Univ Ben Gurion Method for isolating and culturing unculturable microorganisms
ATE414177T1 (de) 2002-09-30 2008-11-15 Hoffmann La Roche Oligonukleotide zur genotypisierung des thymidylat-synthase gens
US20040081962A1 (en) 2002-10-23 2004-04-29 Caifu Chen Methods for synthesizing complementary DNA
US6979713B2 (en) 2002-11-25 2005-12-27 3M Innovative Properties Company Curable compositions and abrasive articles therefrom
US20050266582A1 (en) 2002-12-16 2005-12-01 Modlin Douglas N Microfluidic system with integrated permeable membrane
US20060094108A1 (en) 2002-12-20 2006-05-04 Karl Yoder Thermal cycler for microfluidic array assays
US20040248299A1 (en) 2002-12-27 2004-12-09 Sumedha Jayasena RNA interference
WO2004065617A2 (en) 2003-01-17 2004-08-05 The Trustees Of Boston University Haplotype analysis
ES2342665T3 (es) 2003-01-29 2010-07-12 454 Corporation Secuenciacion desde dos extremos.
WO2004070042A1 (en) 2003-02-10 2004-08-19 Max-Delbrück-Centrum Für Molekulare Medizin (Mdc) Transposon-based targeting system
US7041481B2 (en) 2003-03-14 2006-05-09 The Regents Of The University Of California Chemical amplification based on fluid partitioning
US7316903B2 (en) 2003-03-28 2008-01-08 United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Detection of nucleic acid sequence variations using phase Mu transposase
US20060078893A1 (en) 2004-10-12 2006-04-13 Medical Research Council Compartmentalised combinatorial chemistry by microfluidic control
GB0307403D0 (en) 2003-03-31 2003-05-07 Medical Res Council Selection by compartmentalised screening
GB0307428D0 (en) 2003-03-31 2003-05-07 Medical Res Council Compartmentalised combinatorial chemistry
JP2006522090A (ja) 2003-04-04 2006-09-28 ファイザー・プロダクツ・インク マイクロ流動化された水中油形エマルジョン及びワクチン組成物
US20100035254A1 (en) 2003-04-08 2010-02-11 Pacific Biosciences Of California, Inc. Composition and method for nucleic acid sequencing
EP3616781A1 (de) 2003-04-10 2020-03-04 President and Fellows of Harvard College Erzeugung und kontrolle von fluiden
EP1629286A1 (de) 2003-05-16 2006-03-01 Global Technologies (NZ) Ltd. Verfahren und vorrichtung zum mischen von probe und reagens in einer suspensionsflüssigkeit
WO2004103565A2 (de) 2003-05-19 2004-12-02 Hans-Knöll-Institut für Naturstoff-Forschung e.V. Vorrichtung und verfahren zur strukturierung von flüssigkeiten und zum zudosieren von reaktionsflüssigkeiten zu in separationsmedium eingebetteten flüssigkeitskompartimenten
WO2004105734A1 (en) 2003-05-28 2004-12-09 Valorisation Recherche, Societe En Commandite Method of preparing microcapsules
GB0313170D0 (en) 2003-06-09 2003-07-16 Qinetiq Ltd Method and apparatus for spore disruption and/or detection
CA2529285A1 (en) 2003-06-13 2004-12-29 The General Hospital Corporation Microfluidic systems for size based removal of red blood cells and platelets from blood
GB2403475B (en) 2003-07-01 2008-02-06 Oxitec Ltd Stable integrands
GB0315438D0 (en) 2003-07-02 2003-08-06 Univ Manchester Analysis of mixed cell populations
JP5183063B2 (ja) 2003-07-05 2013-04-17 ザ ジョンズ ホプキンス ユニバーシティ 遺伝的変異の検出および列挙のための方法ならびに組成物
EP1658133A1 (de) 2003-08-27 2006-05-24 President And Fellows Of Harvard College Elektronische steuerung von fluidspezies
JP4988345B2 (ja) 2003-09-04 2012-08-01 ザ・ユナイテッド・ステイツ・オブ・アメリカ・アズ・リプレゼンティッド・バイ・ザ・デパートメント・オブ・ヴェテランズ・アフェアーズ 眼用ハイドロゲルナノコンポジット
US7354706B2 (en) 2003-09-09 2008-04-08 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Use of photopolymerization for amplification and detection of a molecular recognition event
EP1672064A4 (de) 2003-09-22 2006-12-20 Riken Effizientes verfahren zur herstellung einer inverted-repeat-dna-struktur
WO2005069001A1 (ja) 2003-09-25 2005-07-28 Toyama Prefecture マイクロウェルアレイチップ及びその製造方法
EP1694869A2 (de) 2003-11-10 2006-08-30 Investigen, Inc. Verfahren zur herstellung von nukleinsäure für einen nachweis
WO2005049787A2 (en) 2003-11-24 2005-06-02 Yeda Research And Development Co.Ltd. Compositions and methods for in vitro sorting of molecular and cellular libraries
US8071364B2 (en) 2003-12-24 2011-12-06 Transgenrx, Inc. Gene therapy using transposon-based vectors
US20050181379A1 (en) 2004-02-18 2005-08-18 Intel Corporation Method and device for isolating and positioning single nucleic acid molecules
WO2005082098A2 (en) 2004-02-27 2005-09-09 President And Fellows Of Harvard College Polony fluorescent in situ sequencing beads
US20100216153A1 (en) 2004-02-27 2010-08-26 Helicos Biosciences Corporation Methods for detecting fetal nucleic acids and diagnosing fetal abnormalities
US8015913B2 (en) 2004-03-10 2011-09-13 Sunstream Scientific, Inc. Pneumatic cylinder for precision servo type applications
KR100552706B1 (ko) 2004-03-12 2006-02-20 삼성전자주식회사 핵산 증폭 방법 및 장치
US20050221339A1 (en) 2004-03-31 2005-10-06 Medical Research Council Harvard University Compartmentalised screening by microfluidic control
WO2005099419A2 (en) 2004-04-13 2005-10-27 President And Fellows Of Harvard College Manipulation and/or detection of biological samples or other objects
US7799553B2 (en) 2004-06-01 2010-09-21 The Regents Of The University Of California Microfabricated integrated DNA analysis system
US7700281B2 (en) 2004-06-30 2010-04-20 Usb Corporation Hot start nucleic acid amplification
US7968085B2 (en) 2004-07-05 2011-06-28 Ascendis Pharma A/S Hydrogel formulations
CN1648671B (zh) 2005-02-06 2012-09-26 成都夸常医学工业有限公司 多反应器分析芯片检测方法和分析芯片及检测装置
US7608434B2 (en) 2004-08-04 2009-10-27 Wisconsin Alumni Research Foundation Mutated Tn5 transposase proteins and the use thereof
WO2006030993A1 (en) 2004-09-14 2006-03-23 Jin-Ho Choy Information code system using dna sequences
US7892731B2 (en) 2004-10-01 2011-02-22 Radix Biosolutions, Ltd. System and method for inhibiting the decryption of a nucleic acid probe sequence used for the detection of a specific nucleic acid
US7968287B2 (en) 2004-10-08 2011-06-28 Medical Research Council Harvard University In vitro evolution in microfluidic systems
WO2007001448A2 (en) 2004-11-04 2007-01-04 Massachusetts Institute Of Technology Coated controlled release polymer particles as efficient oral delivery vehicles for biopharmaceuticals
WO2006051552A2 (en) 2004-11-15 2006-05-18 Yeda Research And Development Co. Ltd. At The Weizmann Institute Of Science Directed evolution and selection using in vitro compartmentalization
US7727477B2 (en) 2004-12-10 2010-06-01 Bio-Rad Laboratories, Inc. Apparatus for priming microfluidics devices with feedback control
US7329493B2 (en) 2004-12-22 2008-02-12 Asiagen Corporation One-tube nested PCR for detecting Mycobacterium tuberculosis
EP2418018B1 (de) 2004-12-23 2013-05-22 Abbott Point of Care Inc. Verfahren zur Separation von Nukleinsäuren
WO2006078841A1 (en) 2005-01-21 2006-07-27 President And Fellows Of Harvard College Systems and methods for forming fluidic droplets encapsulated in particles such as colloidal particles
WO2006081222A2 (en) 2005-01-25 2006-08-03 Compass Genetics, Llc. Isothermal dna amplification
US7407757B2 (en) 2005-02-10 2008-08-05 Population Genetics Technologies Genetic analysis by sequence-specific sorting
US7393665B2 (en) 2005-02-10 2008-07-01 Population Genetics Technologies Ltd Methods and compositions for tagging and identifying polynucleotides
CN101163800B (zh) 2005-02-18 2013-04-17 佳能美国生命科学公司 鉴定生物的基因组dna的装置和方法
EP1867702B1 (de) 2005-02-21 2011-09-28 Kagoshima University Verfahren zur reinigung von biodiesel-kraftstoff
JP2008535644A (ja) 2005-03-04 2008-09-04 プレジデント・アンド・フエローズ・オブ・ハーバード・カレツジ 多重エマルジョンの形成のための方法および装置
US20070054119A1 (en) 2005-03-04 2007-03-08 Piotr Garstecki Systems and methods of forming particles
US9040237B2 (en) 2005-03-04 2015-05-26 Intel Corporation Sensor arrays and nucleic acid sequencing applications
JP2006289250A (ja) 2005-04-08 2006-10-26 Kao Corp マイクロミキサー及びそれを用いた流体混合方法
US8407013B2 (en) 2005-06-07 2013-03-26 Peter K. Rogan AB initio generation of single copy genomic probes
CA2611671C (en) 2005-06-15 2013-10-08 Callida Genomics, Inc. Single molecule arrays for genetic and chemical analysis
JP2006349060A (ja) 2005-06-16 2006-12-28 Ntn Corp ボールねじ
US8828209B2 (en) 2005-06-22 2014-09-09 The Research Foundation For The State University Of New York Massively parallel 2-dimensional capillary electrophoresis
US20070154903A1 (en) 2005-06-23 2007-07-05 Nanosphere, Inc. Selective isolation and concentration of nucleic acids from complex samples
JP4927730B2 (ja) 2005-07-05 2012-05-09 一般財団法人化学及血清療法研究所 改変トランスポゾンベクター及びその利用方法
JP5051490B2 (ja) 2005-07-08 2012-10-17 独立行政法人産業技術総合研究所 マクロ生体材料を内包する無機マイクロカプセルおよびその製造方法
US20070020640A1 (en) 2005-07-21 2007-01-25 Mccloskey Megan L Molecular encoding of nucleic acid templates for PCR and other forms of sequence analysis
FR2888912B1 (fr) 2005-07-25 2007-08-24 Commissariat Energie Atomique Procede de commande d'une communication entre deux zones par electromouillage, dispositif comportant des zones isolables les unes des autres et procede de realisation d'un tel dispositif
DK1924704T3 (da) 2005-08-02 2011-09-05 Rubicon Genomics Inc Sammensætninger og fremgangsmåder til bearbejdning og mangfoldiggørelse af DNA, herunder ved anvendelse af flere enzymer i en enkelt reaktion
DE102005037401B4 (de) 2005-08-08 2007-09-27 MAX-PLANCK-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Bildung einer Emulsion in einem fluidischen Mikrosystem
WO2007024840A2 (en) 2005-08-22 2007-03-01 Critical Therapeutics, Inc. Method of quantitating nucleic acids by flow cytometry microparticle-based array
EP2660482B1 (de) 2005-08-22 2019-08-07 Life Technologies Corporation Vorrichtung, System und Verfahren unter Verwendung von nichtmischbaren Flüssigkeiten mit unterschiedlichen Volumen
JP2007074967A (ja) 2005-09-13 2007-03-29 Canon Inc 識別子プローブ及びそれを用いた核酸増幅方法
WO2007084192A2 (en) 2005-09-16 2007-07-26 The Regents Of The University Of California A colorimetric bio-barcode amplification assay for analyte detection
US7960104B2 (en) 2005-10-07 2011-06-14 Callida Genomics, Inc. Self-assembled single molecule arrays and uses thereof
US20070111241A1 (en) 2005-10-14 2007-05-17 Nezih Cereb System and method for accessing, tracking, and editing sequence analysis and software to accomplish the same
EP1954838B1 (de) 2005-11-14 2014-02-26 Life Technologies Corporation Kodierte moleküle zur erkennung von zielanalyten
US20070134277A1 (en) 2005-12-09 2007-06-14 Children's Medical Center Corporation Pharmaceutical formulation for sulfur-containing drugs in liquid dosage forms
US7932037B2 (en) 2007-12-05 2011-04-26 Perkinelmer Health Sciences, Inc. DNA assays using amplicon probes on encoded particles
US20100137163A1 (en) 2006-01-11 2010-06-03 Link Darren R Microfluidic Devices and Methods of Use in The Formation and Control of Nanoreactors
WO2007087312A2 (en) 2006-01-23 2007-08-02 Population Genetics Technologies Ltd. Molecular counting
US7544473B2 (en) 2006-01-23 2009-06-09 Population Genetics Technologies Ltd. Nucleic acid analysis using sequence tokens
JP2009524825A (ja) 2006-01-27 2009-07-02 プレジデント アンド フェロウズ オブ ハーバード カレッジ 流体ドロップレットの合体
EP3002338B1 (de) 2006-02-02 2019-05-08 The Board of Trustees of The Leland Stanford Junior University Nicht-invasives fötales genetisches screening mittels digitaler analyse
WO2007092538A2 (en) 2006-02-07 2007-08-16 President And Fellows Of Harvard College Methods for making nucleotide probes for sequencing and synthesis
GB0603251D0 (en) 2006-02-17 2006-03-29 Isis Innovation DNA conformation
JP5180845B2 (ja) 2006-02-24 2013-04-10 カリダ・ジェノミックス・インコーポレイテッド Dnaアレイ上でのハイスループットゲノム配列決定
SG10201405158QA (en) 2006-02-24 2014-10-30 Callida Genomics Inc High throughput genome sequencing on dna arrays
US20070231823A1 (en) 2006-03-23 2007-10-04 Mckernan Kevin J Directed enrichment of genomic DNA for high-throughput sequencing
JP4921829B2 (ja) 2006-03-30 2012-04-25 株式会社東芝 微粒子の製造装置、乳化剤保持部、微粒子の製造方法および分子膜の製造方法
US20090181864A1 (en) 2006-03-31 2009-07-16 Nam Trung Nguyen Active control for droplet-based microfluidics
US7598091B2 (en) 2006-04-04 2009-10-06 Micropoint Bioscience, Inc. Micromachined diagnostic device with controlled flow of fluid and reaction
WO2009140373A2 (en) 2008-05-13 2009-11-19 Advanced Liquid Logic, Inc. Droplet actuator devices, systems, and methods
WO2007123908A2 (en) 2006-04-18 2007-11-01 Advanced Liquid Logic, Inc. Droplet-based multiwell operations
US7815871B2 (en) 2006-04-18 2010-10-19 Advanced Liquid Logic, Inc. Droplet microactuator system
JP2009538123A (ja) 2006-04-19 2009-11-05 アプライド バイオシステムズ, エルエルシー ゲル非含有ビーズベースの配列決定のための試薬、方法およびライブラリー
US7811603B2 (en) 2006-05-09 2010-10-12 The Regents Of The University Of California Microfluidic device for forming monodisperse lipoplexes
US20080003142A1 (en) 2006-05-11 2008-01-03 Link Darren R Microfluidic devices
CA2653095C (en) 2006-05-22 2013-07-16 Nanostring Technologies, Inc. Systems and methods for analyzing nanoreporters
RU2321638C2 (ru) 2006-05-23 2008-04-10 Закрытое акционерное общество "Молекулярно-медицинские технологии" Способ изготовления многофункционального мультичипа, мультичип для последовательного или параллельного скрининга биополимеров, способ анализа биополимеров и набор для осуществления способа
WO2007140015A2 (en) 2006-05-26 2007-12-06 Althea Technologies, Inc Biochemical analysis of partitioned cells
FR2901717A1 (fr) 2006-05-30 2007-12-07 Centre Nat Rech Scient Procede de traitement de gouttes dans un circuit microfluidique.
AU2007260676A1 (en) 2006-06-14 2007-12-21 Artemis Health, Inc. Rare cell analysis using sample splitting and DNA tags
WO2007149432A2 (en) 2006-06-19 2007-12-27 The Johns Hopkins University Single-molecule pcr on microparticles in water-in-oil emulsions
US20080076909A1 (en) 2006-06-30 2008-03-27 Applera Corporation Emulsion pcr and amplicon capture
EP1878501A1 (de) 2006-07-14 2008-01-16 Roche Diagnostics GmbH Vorrichtung zur Heizung und Kühlung
US9012390B2 (en) 2006-08-07 2015-04-21 Raindance Technologies, Inc. Fluorocarbon emulsion stabilizing surfactants
EP2064346B1 (de) 2006-09-06 2013-11-06 Canon U.S. Life Sciences, Inc. Konfiguration eines chips und einer kartusche zur durchführung von mikrofluidischen tests
EP2066699B1 (de) 2006-09-25 2020-02-12 Archer-Daniels-Midland Company Superabsorbierende oberflächenbehandelte carobxyalkylierte polysaccharide und herstellungsverfahren dafür
US7935518B2 (en) 2006-09-27 2011-05-03 Alessandra Luchini Smart hydrogel particles for biomarker harvesting
US20080166720A1 (en) 2006-10-06 2008-07-10 The Regents Of The University Of California Method and apparatus for rapid nucleic acid analysis
WO2008052138A2 (en) 2006-10-25 2008-05-02 The Regents Of The University Of California Inline-injection microdevice and microfabricated integrated dna analysis system using same
WO2008070352A2 (en) 2006-10-27 2008-06-12 Complete Genomics, Inc. Efficient arrays of amplified polynucleotides
EP2091647A2 (de) 2006-11-14 2009-08-26 Handylab, Inc. Mikrofluidisches system für parallele amplifikation und erkennung von polynukleotiden
CA2669728C (en) 2006-11-15 2017-04-11 Biospherex Llc Multitag sequencing and ecogenomics analysis
US20080242560A1 (en) 2006-11-21 2008-10-02 Gunderson Kevin L Methods for generating amplified nucleic acid arrays
JP5320546B2 (ja) 2006-12-13 2013-10-23 国立大学法人名古屋大学 Tol1因子のトランスポザーゼ及びそれを用いたDNA導入システム
JP2008167722A (ja) 2007-01-15 2008-07-24 Konica Minolta Medical & Graphic Inc 磁性支持体上での加熱による核酸単離方法
US7844658B2 (en) 2007-01-22 2010-11-30 Comcast Cable Holdings, Llc System and method for providing an application to a device
US20080176768A1 (en) 2007-01-23 2008-07-24 Honeywell Honeywell International Hydrogel microarray with embedded metal nanoparticles
WO2008093098A2 (en) 2007-02-02 2008-08-07 Illumina Cambridge Limited Methods for indexing samples and sequencing multiple nucleotide templates
US8003312B2 (en) 2007-02-16 2011-08-23 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Multiplex cellular assays using detectable cell barcodes
FI20075124A0 (fi) 2007-02-21 2007-02-21 Valtion Teknillinen Menetelmä ja testikitti nukleotidivariaatioiden toteamiseksi
US9029085B2 (en) 2007-03-07 2015-05-12 President And Fellows Of Harvard College Assays and other reactions involving droplets
US20080228268A1 (en) 2007-03-15 2008-09-18 Uluru, Inc. Method of Formation of Viscous, Shape Conforming Gels and Their Uses as Medical Prosthesis
EP2136786B8 (de) 2007-03-28 2012-11-14 President and Fellows of Harvard College Vorrichtung zur Formung von Tröpfchen
US20100130369A1 (en) 2007-04-23 2010-05-27 Advanced Liquid Logic, Inc. Bead-Based Multiplexed Analytical Methods and Instrumentation
CN101293191B (zh) 2007-04-25 2011-11-09 中国科学院过程工程研究所 一种琼脂糖凝胶微球的制备方法
US20090105959A1 (en) 2007-06-01 2009-04-23 Braverman Michael S System and method for identification of individual samples from a multiplex mixture
CA2689427C (en) 2007-06-05 2015-12-29 Eugenia Kumacheva Multiple continuous microfluidic reactors for the scaled up synthesis of gel or polymer particles
WO2009005680A1 (en) 2007-06-29 2009-01-08 President And Fellows Of Harvard College Methods and apparatus for manipulation of fluidic species
US20090068170A1 (en) 2007-07-13 2009-03-12 President And Fellows Of Harvard College Droplet-based selection
US8454906B2 (en) 2007-07-24 2013-06-04 The Regents Of The University Of California Microfabricated droplet generator for single molecule/cell genetic analysis in engineered monodispersed emulsions
US20130084243A1 (en) 2010-01-27 2013-04-04 Liliane Goetsch Igf-1r specific antibodies useful in the detection and diagnosis of cellular proliferative disorders
CA2696843A1 (en) 2007-08-15 2009-02-19 Opgen, Inc. Method, system and software arrangement for comparative analysis and phylogeny with whole-genome optical maps
US8563527B2 (en) 2007-08-20 2013-10-22 Pharmain Corporation Oligonucleotide core carrier compositions for delivery of nucleic acid-containing therapeutic agents, methods of making and using the same
CA2696471C (en) 2007-08-21 2013-07-09 The Regents Of The University Of California Copolymer-stabilized emulsions
US8268564B2 (en) 2007-09-26 2012-09-18 President And Fellows Of Harvard College Methods and applications for stitched DNA barcodes
WO2009048532A2 (en) 2007-10-05 2009-04-16 President And Fellows Of Harvard College Formation of particles for ultrasound application, drug release, and other uses, and microfluidic methods of preparation
US20090099040A1 (en) 2007-10-15 2009-04-16 Sigma Aldrich Company Degenerate oligonucleotides and their uses
US20100086914A1 (en) 2008-10-03 2010-04-08 Roche Molecular Systems, Inc. High resolution, high throughput hla genotyping by clonal sequencing
WO2009061372A1 (en) 2007-11-02 2009-05-14 President And Fellows Of Harvard College Systems and methods for creating multi-phase entities, including particles and/or fluids
US8592150B2 (en) 2007-12-05 2013-11-26 Complete Genomics, Inc. Methods and compositions for long fragment read sequencing
US20110008775A1 (en) 2007-12-10 2011-01-13 Xiaolian Gao Sequencing of nucleic acids
US7771944B2 (en) 2007-12-14 2010-08-10 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Methods for determining genetic haplotypes and DNA mapping
JP5738597B2 (ja) 2007-12-21 2015-06-24 プレジデント アンド フェローズ オブ ハーバード カレッジ 核酸の配列決定のためのシステムおよび方法
EP3699291A1 (de) 2008-01-17 2020-08-26 Sequenom, Inc. Einzelmolekülnukleinsäurensequenzanalyseverfahren und zusammensetzungen
WO2009100382A1 (en) 2008-02-07 2009-08-13 Pacific Biosciences Of California, Inc. Cis reactive oxygen quenchers integrated into linkers
JP5468271B2 (ja) 2008-02-08 2014-04-09 花王株式会社 微粒子分散液の製造方法
US8034568B2 (en) 2008-02-12 2011-10-11 Nugen Technologies, Inc. Isothermal nucleic acid amplification methods and compositions
EP2253713B1 (de) 2008-03-11 2015-02-25 National Cancer Center Verfahren zur messung von kopiezahlen von chromosomen, genen oder speziellen nukleotidsequenzen mithilfe eines snp-arrays
US8961902B2 (en) 2008-04-23 2015-02-24 Bioscale, Inc. Method and apparatus for analyte processing
EP3002489B1 (de) * 2008-05-16 2017-09-20 President and Fellows of Harvard College Ventile und andere flusssteuerungen für fluidische systeme einschliesslich mikrofluidischer systeme
US9068181B2 (en) * 2008-05-23 2015-06-30 The General Hospital Corporation Microfluidic droplet encapsulation
GB0810051D0 (en) 2008-06-02 2008-07-09 Oxford Biodynamics Ltd Method of diagnosis
KR20110042050A (ko) 2008-06-05 2011-04-22 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 폴리머좀, 콜로이드좀, 리포좀 및 유체 액적과 관련된 다른 종
US8122901B2 (en) 2008-06-30 2012-02-28 Canon U.S. Life Sciences, Inc. System and method for microfluidic flow control
US8198028B2 (en) 2008-07-02 2012-06-12 Illumina Cambridge Limited Using populations of beads for the fabrication of arrays on surfaces
US8388945B2 (en) 2008-07-11 2013-03-05 Eth Zurich Degradable microcapsules
WO2010009365A1 (en) 2008-07-18 2010-01-21 Raindance Technologies, Inc. Droplet libraries
US10722562B2 (en) 2008-07-23 2020-07-28 Immudex Aps Combinatorial analysis and repair
US20100062494A1 (en) 2008-08-08 2010-03-11 President And Fellows Of Harvard College Enzymatic oligonucleotide pre-adenylation
DK2157304T3 (da) 2008-08-18 2013-10-07 Waertsilae Nsd Schweiz Ag Bearbejdningsfremgangsmåde til fremstilling af en løbeflade på en cylindervæg af en cylinderforing i en stempelforbrændingsmotor og cylinderforing
US8383345B2 (en) 2008-09-12 2013-02-26 University Of Washington Sequence tag directed subassembly of short sequencing reads into long sequencing reads
WO2010033200A2 (en) 2008-09-19 2010-03-25 President And Fellows Of Harvard College Creation of libraries of droplets and related species
US8709762B2 (en) 2010-03-02 2014-04-29 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for hot-start amplification via a multiple emulsion
WO2013016459A1 (en) 2011-07-25 2013-01-31 Bio-Rad Laboratories, Inc. Breakage of an emulsion containing nucleic acid
US9156010B2 (en) 2008-09-23 2015-10-13 Bio-Rad Laboratories, Inc. Droplet-based assay system
US9492797B2 (en) 2008-09-23 2016-11-15 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for detection of spaced droplets
US20120252015A1 (en) 2011-02-18 2012-10-04 Bio-Rad Laboratories Methods and compositions for detecting genetic material
MX2011002936A (es) 2008-09-25 2011-04-11 Cephalon Inc Formulaciones liquidas de bendamustina.
US8361299B2 (en) 2008-10-08 2013-01-29 Sage Science, Inc. Multichannel preparative electrophoresis system
US9080211B2 (en) 2008-10-24 2015-07-14 Epicentre Technologies Corporation Transposon end compositions and methods for modifying nucleic acids
JP5794572B2 (ja) 2008-10-24 2015-10-14 エピセンター テクノロジーズ コーポレイションEpicentre Technologies Corporation 核酸を修飾するためのトランスポゾン末端組成物及び方法
US20100113296A1 (en) 2008-11-05 2010-05-06 Joel Myerson Methods And Kits For Nucleic Acid Analysis
US8748103B2 (en) 2008-11-07 2014-06-10 Sequenta, Inc. Monitoring health and disease status using clonotype profiles
US7958812B2 (en) * 2008-11-10 2011-06-14 Milliken & Company Flexible spike and ballistic resistant panel
EP2352852A4 (de) 2008-12-02 2012-10-24 Bio Rad Laboratories Chromatinstrukturerkennung
US8748094B2 (en) 2008-12-19 2014-06-10 President And Fellows Of Harvard College Particle-assisted nucleic acid sequencing
US10839940B2 (en) 2008-12-24 2020-11-17 New York University Method, computer-accessible medium and systems for score-driven whole-genome shotgun sequence assemble
KR101065807B1 (ko) * 2009-01-23 2011-09-19 충남대학교산학협력단 액적 기반의 미세유체 칩을 이용한 마이크로 캡슐 제조방법
US9347092B2 (en) 2009-02-25 2016-05-24 Roche Molecular System, Inc. Solid support for high-throughput nucleic acid analysis
JP5457222B2 (ja) 2009-02-25 2014-04-02 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲー 小型化ハイスループット核酸分析
KR101793744B1 (ko) 2009-03-13 2017-11-03 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 유동 포커싱 미세유동 장치의 규모 확장
WO2010104604A1 (en) * 2009-03-13 2010-09-16 President And Fellows Of Harvard College Method for the controlled creation of emulsions, including multiple emulsions
EP2230312A1 (de) 2009-03-19 2010-09-22 Helmholtz-Zentrum für Infektionsforschung GmbH Sondenverbindung zum Nachweisen und Isolieren von Enzymen sowie Mittel und Verfahren zu ihrer Verwendung
EP3415235A1 (de) 2009-03-23 2018-12-19 Raindance Technologies Inc. Manipulation von mikrofluidiktröpfchen
DK3002337T3 (en) 2009-03-30 2019-02-18 Illumina Inc ANALYSIS OF EXPRESSION OF GENES IN SINGLE CELLS
CA3018687C (en) 2009-04-02 2021-07-13 Fluidigm Corporation Multi-primer amplification method for barcoding of target nucleic acids
EP2427572B1 (de) 2009-05-01 2013-08-28 Illumina, Inc. Sequenzierungsverfahren
FR2945545B1 (fr) 2009-05-14 2011-08-05 Univ Aix Marseille Ii Methode de detection d'adn procaryote extrait d'un echantillon de selles
FR2945819B1 (fr) 2009-05-19 2011-06-17 Commissariat Energie Atomique Dispositif et procede d'isolement de cibles biologiques ou chimiques
US8574835B2 (en) 2009-05-29 2013-11-05 Life Technologies Corporation Scaffolded nucleic acid polymer particles and methods of making and using
US9524369B2 (en) 2009-06-15 2016-12-20 Complete Genomics, Inc. Processing and analysis of complex nucleic acid sequence data
EP2977455B1 (de) 2009-06-15 2020-04-15 Complete Genomics, Inc. Verfahren zur sequenzierung langer fragmentabschnitte
SG177369A1 (en) 2009-06-26 2012-02-28 Harvard College Fluid injection
SG177726A1 (en) 2009-07-20 2012-02-28 Siloam Biosciences Inc Microfluidic assay platforms
US20110028412A1 (en) 2009-08-03 2011-02-03 Cappellos, Inc. Herbal enhanced analgesic formulations
US20110033548A1 (en) 2009-08-05 2011-02-10 E.I. Du Pont De Nemours And Company Degradable crosslinked aminated dextran microspheres and methods of use
EP2467479B1 (de) 2009-08-20 2016-01-06 Population Genetics Technologies Ltd Zusammensetzungen und verfahren für intramolekulare neuanordnung von nukleinsäuren
JP5212313B2 (ja) 2009-08-24 2013-06-19 株式会社日立プラントテクノロジー 乳化装置
RU2552215C2 (ru) 2009-09-01 2015-06-10 Конинклейке Филипс Электроникс Н.В. Устройство и способ отбора нуклеиновых кислот с помощью микроматриц
EP2940153B1 (de) 2009-09-02 2020-05-13 Bio-Rad Laboratories, Inc. System zum Mischen von Flüssigkeiten durch Koaleszenz mehrerer Emulsionen
KR20120089661A (ko) 2009-09-02 2012-08-13 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 분출 및 다른 기술을 사용하여 생성되는 다중 에멀션
US9625454B2 (en) * 2009-09-04 2017-04-18 The Research Foundation For The State University Of New York Rapid and continuous analyte processing in droplet microfluidic devices
GB0918564D0 (en) 2009-10-22 2009-12-09 Plasticell Ltd Nested cell encapsulation
EP3842150A1 (de) 2009-10-27 2021-06-30 President and Fellows of Harvard College Tröpfchenbildungsverfahren
US10207240B2 (en) 2009-11-03 2019-02-19 Gen9, Inc. Methods and microfluidic devices for the manipulation of droplets in high fidelity polynucleotide assembly
CN107028886A (zh) 2009-11-04 2017-08-11 不列颠哥伦比亚大学 含有核酸的脂质粒子及相关的方法
CA2767028A1 (en) 2009-11-25 2011-06-03 Quantalife, Inc. Methods and compositions for detecting genetic material
WO2011066476A1 (en) 2009-11-25 2011-06-03 Quantalife, Inc. Methods and compositions for detecting genetic material
US9023769B2 (en) 2009-11-30 2015-05-05 Complete Genomics, Inc. cDNA library for nucleic acid sequencing
US8835358B2 (en) 2009-12-15 2014-09-16 Cellular Research, Inc. Digital counting of individual molecules by stochastic attachment of diverse labels
US8932812B2 (en) 2009-12-17 2015-01-13 Keygene N.V. Restriction enzyme based whole genome sequencing
WO2011079176A2 (en) 2009-12-23 2011-06-30 Raindance Technologies, Inc. Microfluidic systems and methods for reducing the exchange of molecules between droplets
JP5901046B2 (ja) 2010-02-19 2016-04-06 国立大学法人 千葉大学 OATP1B3mRNAの新規な選択的スプライシングバリアント
US20110257889A1 (en) 2010-02-24 2011-10-20 Pacific Biosciences Of California, Inc. Sequence assembly and consensus sequence determination
EP2539450B1 (de) 2010-02-25 2016-02-17 Advanced Liquid Logic, Inc. Verfahren zur herstellung von nukleinsäure-bibliotheken
EP2550528B1 (de) 2010-03-25 2019-09-11 Bio-Rad Laboratories, Inc. Tropfenerzeugung für tropfenbasierte prüfungen
FR2958186A1 (fr) 2010-03-30 2011-10-07 Ecole Polytech Dispositif de formation de gouttes dans un circuit microfluide.
US20120000777A1 (en) 2010-06-04 2012-01-05 The Regents Of The University Of California Devices and methods for forming double emulsion droplet compositions and polymer particles
US8703493B2 (en) 2010-06-15 2014-04-22 Src, Inc. Location analysis using fire retardant-protected nucleic acid-labeled tags
US20120003657A1 (en) 2010-07-02 2012-01-05 Samuel Myllykangas Targeted sequencing library preparation by genomic dna circularization
US20120238738A1 (en) 2010-07-19 2012-09-20 New England Biolabs, Inc. Oligonucleotide Adapters: Compositions and Methods of Use
CN103202812B (zh) 2010-08-09 2015-10-28 南京大学 一种制备用于体内递送药理活性物质的蛋白纳米粒的方法
WO2012019765A1 (en) 2010-08-10 2012-02-16 European Molecular Biology Laboratory (Embl) Methods and systems for tracking samples and sample combinations
US20130203675A1 (en) 2010-09-16 2013-08-08 Joseph M. DeSimone Asymmetric biofunctional silyl monomers and particles thereof as prodrugs and delivery vehicles for pharmaceutical, chemical and biological agents
DK2623613T3 (en) 2010-09-21 2016-10-03 Population Genetics Tech Ltd Increasing the reliability of the allele-indications by molecular counting
NZ610129A (en) 2010-10-04 2014-08-29 Genapsys Inc Systems and methods for automated reusable parallel biological reactions
US9999886B2 (en) * 2010-10-07 2018-06-19 The Regents Of The University Of California Methods and systems for on demand droplet generation and impedance based detection
WO2012048341A1 (en) 2010-10-08 2012-04-12 President And Fellows Of Harvard College High-throughput single cell barcoding
US10392726B2 (en) 2010-10-08 2019-08-27 President And Fellows Of Harvard College High-throughput immune sequencing
EP2633069B1 (de) 2010-10-26 2015-07-01 Illumina, Inc. Sequenzierungsverfahren
US20130225623A1 (en) 2010-10-27 2013-08-29 Mount Sinai School Of Medicine Methods of Treating Psychiatric or Neurological Disorders with MGLUR Antagonists
CA3140602C (en) 2010-11-01 2023-10-03 Bio-Rad Laboratories, Inc. System for forming emulsions
CN102008983B (zh) * 2010-11-01 2012-08-08 武汉大学 适用于微胶囊生产的微流控芯片
EP2635679B1 (de) 2010-11-05 2017-04-19 Illumina, Inc. Verknüpfung von sequenzstücken mit gepaarten code-tags
US9074251B2 (en) 2011-02-10 2015-07-07 Illumina, Inc. Linking sequence reads using paired code tags
US8829171B2 (en) 2011-02-10 2014-09-09 Illumina, Inc. Linking sequence reads using paired code tags
EP3193180A1 (de) 2010-11-17 2017-07-19 Advanced Liquid Logic, Inc. Kapazitätsdetektion in einem tröpfchenaktuator
EP2652155B1 (de) 2010-12-16 2016-11-16 Gigagen, Inc. Verfahren für massiv parallele analyse von nukleinsäuren in einzelzellen
AU2011348267A1 (en) 2010-12-23 2013-08-01 Sequenom, Inc. Fetal genetic variation detection
US20120191366A1 (en) 2011-01-20 2012-07-26 Nathaniel Pearson Methods and Apparatus for Assigning a Meaningful Numeric Value to Genomic Variants, and Searching and Assessing Same
GB201101429D0 (en) 2011-01-27 2011-03-16 Biocompatibles Uk Ltd Drug delivery system
US8765455B2 (en) 2011-01-27 2014-07-01 Lawrence Livermore National Security, Llc Chip-based droplet sorting
US9238671B2 (en) 2011-01-28 2016-01-19 Illumina, Inc. Oligonucleotide replacement for di-tagged and directional libraries
JP6017458B2 (ja) 2011-02-02 2016-11-02 ユニヴァーシティ・オブ・ワシントン・スルー・イッツ・センター・フォー・コマーシャリゼーション 大量並列連続性マッピング
US9150852B2 (en) 2011-02-18 2015-10-06 Raindance Technologies, Inc. Compositions and methods for molecular labeling
EP2678449A4 (de) 2011-02-25 2015-06-24 Illumina Inc Verfahren und systeme zur haplotypenbestimmung
US9260753B2 (en) 2011-03-24 2016-02-16 President And Fellows Of Harvard College Single cell nucleic acid detection and analysis
GB2489714B (en) 2011-04-05 2013-11-06 Tracesa Ltd Fluid Identification Method
JP2014516514A (ja) 2011-04-14 2014-07-17 コンプリート・ジェノミックス・インコーポレイテッド 複合核酸配列データの処理および解析
EP2702175B1 (de) 2011-04-25 2018-08-08 Bio-Rad Laboratories, Inc. Verfahren und zusammensetzungen zur nukleinsäureanalyse
WO2012149438A1 (en) 2011-04-28 2012-11-01 Life Technologies Corporation Methods and compositions for multiplex pcr
BR112013027540A2 (pt) 2011-04-28 2016-09-20 Us Dept Veterans Affairs banco de composição de polinucleotídeo, método para produzir um ou mais polinucletídeos de interesse e método para analisar e utilizar dados de sequenciamento
WO2012157684A1 (ja) 2011-05-16 2012-11-22 地方独立行政法人 大阪府立病院機構 血中dnaの定量的検出による悪性新生物の病勢の進行を評価する方法
US9005935B2 (en) 2011-05-23 2015-04-14 Agilent Technologies, Inc. Methods and compositions for DNA fragmentation and tagging by transposases
KR20140034242A (ko) 2011-05-23 2014-03-19 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 다중 에멀젼을 포함하는 에멀젼의 제어
EP2714938B1 (de) 2011-05-27 2017-11-15 President and Fellows of Harvard College Verfahren zur amplifikation des gesamtgenoms einer einzelzelle
US8841071B2 (en) 2011-06-02 2014-09-23 Raindance Technologies, Inc. Sample multiplexing
US9150916B2 (en) 2011-06-24 2015-10-06 Beat Christen Compositions and methods for identifying the essential genome of an organism
US8927218B2 (en) 2011-06-27 2015-01-06 Flir Systems, Inc. Methods and compositions for segregating target nucleic acid from mixed nucleic acid samples
US8975302B2 (en) 2011-07-07 2015-03-10 Life Technologies Corporation Polymer particles, nucleic acid polymer particles and methods of making and using the same
US20130017978A1 (en) 2011-07-11 2013-01-17 Finnzymes Oy Methods and transposon nucleic acids for generating a dna library
US9605304B2 (en) 2011-07-20 2017-03-28 The Hong Kong Polytechnic University Ultra-stable oligonucleotide-gold and-silver nanoparticle conjugates and method of their preparation
WO2013019751A1 (en) 2011-07-29 2013-02-07 Bio-Rad Laboratories, Inc., Library characterization by digital assay
WO2013035114A1 (en) 2011-09-08 2013-03-14 Decode Genetics Ehf Tp53 genetic variants predictive of cancer
AU2012304328B2 (en) 2011-09-09 2017-07-20 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Methods for obtaining a sequence
US9514272B2 (en) 2011-10-12 2016-12-06 Complete Genomics, Inc. Identification of DNA fragments and structural variations
US9469874B2 (en) 2011-10-18 2016-10-18 The Regents Of The University Of California Long-range barcode labeling-sequencing
US20130109576A1 (en) 2011-10-28 2013-05-02 Anthony P. Shuber Methods for detecting mutations
EP2774277A4 (de) 2011-11-04 2015-07-22 Intel Corp Signalisierung zur konfiguration koordinierter downlink-mehrpunktkommunikationen
WO2013072790A1 (en) 2011-11-16 2013-05-23 International Business Machines Corporation Microfluidic device with deformable valve
US9938524B2 (en) 2011-11-22 2018-04-10 Active Motif, Inc. Multiplex isolation of protein-associated nucleic acids
US10689643B2 (en) 2011-11-22 2020-06-23 Active Motif, Inc. Targeted transposition for use in epigenetic studies
ES2953308T3 (es) 2011-12-22 2023-11-10 Harvard College Composiciones y métodos para la detección de analitos
US20150125865A1 (en) 2011-12-23 2015-05-07 Gigagen, Inc. Methods And Apparatuses For Droplet Mixing
JP6170074B2 (ja) 2012-02-09 2017-07-26 ライフ テクノロジーズ コーポレーション 親水性ポリマー粒子およびその製造方法
US9637781B2 (en) 2012-02-14 2017-05-02 The Johns Hopkins University MiRNA analysis methods
WO2013123382A1 (en) 2012-02-15 2013-08-22 Wisconsin Alumni Research Foundation Dithioamine reducing agents
WO2013123125A1 (en) 2012-02-17 2013-08-22 President And Fellows Of Harvard College Assembly of nucleic acid sequences in emulsions
EP2817418B1 (de) 2012-02-24 2017-10-11 Raindance Technologies, Inc. Markierung und probenvorbereitung zur sequenzierung
LT3305918T (lt) 2012-03-05 2020-09-25 President And Fellows Of Harvard College Būdai, skirti epigenetinių sekų sudarymui
NO2694769T3 (de) 2012-03-06 2018-03-03
US9552458B2 (en) 2012-03-16 2017-01-24 The Research Institute At Nationwide Children's Hospital Comprehensive analysis pipeline for discovery of human genetic variation
EP2647426A1 (de) 2012-04-03 2013-10-09 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Replikation von verteilten Nukleinsäuremolekülen mit Aufrechterhaltung ihrer relativen Verteilung durch hybridisierungsbasierte Bindung
US8209130B1 (en) 2012-04-04 2012-06-26 Good Start Genetics, Inc. Sequence assembly
US20130296173A1 (en) 2012-04-23 2013-11-07 Complete Genomics, Inc. Pre-anchor wash
CN109082462B (zh) 2012-05-21 2022-10-28 斯克利普斯研究所 样品制备方法
JP6558830B2 (ja) 2012-06-15 2019-08-14 ボード・オブ・リージエンツ,ザ・ユニバーシテイ・オブ・テキサス・システム 複数転写産物のハイスループットシークエンシング
US9951386B2 (en) 2014-06-26 2018-04-24 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10323279B2 (en) 2012-08-14 2019-06-18 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US10221442B2 (en) 2012-08-14 2019-03-05 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20150005199A1 (en) 2012-08-14 2015-01-01 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US11591637B2 (en) 2012-08-14 2023-02-28 10X Genomics, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20140378345A1 (en) 2012-08-14 2014-12-25 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20140378322A1 (en) 2012-08-14 2014-12-25 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20150005200A1 (en) 2012-08-14 2015-01-01 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US20140378349A1 (en) 2012-08-14 2014-12-25 10X Technologies, Inc. Compositions and methods for sample processing
US10273541B2 (en) 2012-08-14 2019-04-30 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
US9701998B2 (en) 2012-12-14 2017-07-11 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
AU2013302756C1 (en) 2012-08-14 2018-05-17 10X Genomics, Inc. Microcapsule compositions and methods
WO2014047561A1 (en) 2012-09-21 2014-03-27 The Broad Institute Inc. Compositions and methods for labeling of agents
US9644199B2 (en) 2012-10-01 2017-05-09 Agilent Technologies, Inc. Immobilized transposase complexes for DNA fragmentation and tagging
GB201217772D0 (en) * 2012-10-04 2012-11-14 Base4 Innovation Ltd Sequencing method
FR2996544B1 (fr) 2012-10-08 2015-03-13 Ecole Polytech Circuit microfluidique permettant la mise en contact de gouttes de plusieurs fluides, et procede microfluidique correspondant.
FR2996545B1 (fr) 2012-10-08 2016-03-25 Ecole Polytech Procede microfluidique de traitement et d'analyse d'une solution contenant un materiel biologique, et circuit microfluidique correspondant.
WO2014062717A1 (en) 2012-10-15 2014-04-24 Life Technologies Corporation Compositions, methods, systems and kits for target nucleic acid enrichment
US10155942B2 (en) 2012-11-05 2018-12-18 Takara Bio Usa, Inc. Barcoding nucleic acids
CA2890441A1 (en) 2012-11-07 2014-05-15 Good Start Genetics, Inc. Methods and systems for identifying contamination in samples
US20150299772A1 (en) 2012-12-03 2015-10-22 Elim Biopharmaceuticals, Inc. Single-stranded polynucleotide amplification methods
RU2701850C2 (ru) 2012-12-12 2019-10-01 Те Брод Инститьют, Инк. Конструирование систем, способы и оптимизированные направляющие композиции для манипуляции с последовательностями
EP3567116A1 (de) 2012-12-14 2019-11-13 10X Genomics, Inc. Verfahren und systeme zur verarbeitung von polynukleotiden
CN103055968A (zh) * 2012-12-31 2013-04-24 苏州汶颢芯片科技有限公司 一种油水分离的微流控芯片及其制备方法
EP2752664A1 (de) 2013-01-07 2014-07-09 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. Etikettenfreies Verfahren zur Erkennung von Analyten
US9683230B2 (en) 2013-01-09 2017-06-20 Illumina Cambridge Limited Sample preparation on a solid support
GB202020510D0 (en) 2013-01-17 2021-02-03 Edico Genome Corp Bioinformatics systems, apparatuses, and methods executed on an integrated circuit processing platform
US10381106B2 (en) 2013-01-28 2019-08-13 Hasso-Plattner-Institut Fuer Softwaresystemtechnik Gmbh Efficient genomic read alignment in an in-memory database
KR102190198B1 (ko) 2013-02-08 2020-12-14 10엑스 제노믹스, 인크. 폴리뉴클레오티드 바코드 생성
CN103182333B (zh) * 2013-03-01 2015-07-29 重庆大学 一种脂质体制备和收集装置及方法
SG11201507087WA (en) 2013-03-08 2015-10-29 Bio Rad Laboratories Compositions, methods and systems for polymerase chain reaction assays
EP3919617A1 (de) 2013-03-13 2021-12-08 Illumina, Inc. Verfahren und zusammensetzungen zur nukleinsäuresequenzierung
US9273349B2 (en) 2013-03-14 2016-03-01 Affymetrix, Inc. Detection of nucleic acids
AU2014233373B2 (en) 2013-03-15 2019-10-24 Verinata Health, Inc. Generating cell-free DNA libraries directly from blood
US10119134B2 (en) 2013-03-15 2018-11-06 Abvitro Llc Single cell bar-coding for antibody discovery
US9328382B2 (en) 2013-03-15 2016-05-03 Complete Genomics, Inc. Multiple tagging of individual long DNA fragments
CA2907050C (en) 2013-03-15 2023-09-26 Prognosys Biosciences, Inc. Methods for detecting peptide/mhc/tcr binding
US20140274729A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Nugen Technologies, Inc. Methods, compositions and kits for generation of stranded rna or dna libraries
US11299718B2 (en) 2013-03-15 2022-04-12 4basebio Sl Methods for amplification and sequencing using thermostable TthPrimPol
EP2994559B1 (de) 2013-05-09 2020-07-08 Bio-rad Laboratories, Inc. Magnetischer immundigitaler pcr-test
EP4321628A3 (de) 2013-05-23 2024-04-24 The Board of Trustees of the Leland Stanford Junior University Transposition in natives chromatin für persönliche epigenomik
CN103272657A (zh) * 2013-05-27 2013-09-04 苏州扬清芯片科技有限公司 微流控芯片的液体存储方法
WO2014201273A1 (en) 2013-06-12 2014-12-18 The Broad Institute, Inc. High-throughput rna-seq
WO2014200767A1 (en) 2013-06-12 2014-12-18 The General Hospital Corporation Methods, kits, and systems for multiplexed detection of target molecules and uses thereof
RU2716420C2 (ru) 2013-06-17 2020-03-11 Те Брод Инститьют Инк. Доставка и применение систем crispr-cas, векторов и композиций для целенаправленного воздействия и терапии в печени
US20160208323A1 (en) 2013-06-21 2016-07-21 The Broad Institute, Inc. Methods for Shearing and Tagging DNA for Chromatin Immunoprecipitation and Sequencing
MX361481B (es) 2013-06-27 2018-12-06 10X Genomics Inc Composiciones y metodos para procesamiento de muestras.
EP3019618B1 (de) 2013-07-12 2018-10-31 University of South Alabama Minimale piggybac-vektoren für genomische integration
AU2014312208B2 (en) 2013-08-28 2019-07-25 Becton, Dickinson And Company Massively parallel single cell analysis
US10395758B2 (en) 2013-08-30 2019-08-27 10X Genomics, Inc. Sequencing methods
JP6700173B2 (ja) 2013-09-24 2020-05-27 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア ターゲット検出方法及びシステム
GB201317301D0 (en) 2013-09-30 2013-11-13 Linnarsson Sten Method for capturing and encoding nucleic acid from a plurality of single cells
US9937495B2 (en) 2013-10-28 2018-04-10 Massachusetts Institute Of Technology Hydrogel microstructures with immiscible fluid isolation for small reaction volumes
US9824068B2 (en) 2013-12-16 2017-11-21 10X Genomics, Inc. Methods and apparatus for sorting data
US20140315755A1 (en) 2013-12-26 2014-10-23 Tao Chen Genome-wide Antisense Oligonucleotide and RNAi
CA2935122C (en) 2013-12-30 2023-09-19 Atreca, Inc. Analysis of nucleic acids associated with single cells using nucleic acid barcodes
CN106103713B (zh) 2014-02-03 2021-05-28 赛默飞世尔科技波罗的海封闭股份公司 用于经控制dna片段化的方法
US20160376663A1 (en) 2014-02-27 2016-12-29 Igenomx International Genomics Corporation Methods for analysis of somatic mobile elements, and uses thereof
DE202015009494U1 (de) 2014-04-10 2018-02-08 10X Genomics, Inc. Fluidische Vorrichtungen und Systeme zur Einkapselung und Partitionierung von Reagenzien, und deren Anwendungen
AU2015247779B2 (en) 2014-04-15 2021-06-24 Illumina, Inc. Modified transposases for improved insertion sequence bias and increased DNA input tolerance
US20150298091A1 (en) 2014-04-21 2015-10-22 President And Fellows Of Harvard College Systems and methods for barcoding nucleic acids
DK3299469T3 (da) 2014-04-21 2020-03-30 Harvard College Systemer og fremgangsmåder til at stregkodemarkere nukleinsyre
US10975371B2 (en) 2014-04-29 2021-04-13 Illumina, Inc. Nucleic acid sequence analysis from single cells
US10526601B2 (en) 2014-05-23 2020-01-07 Digenomix Corporation Haploidome determination by digitized transposons
EP3152232B1 (de) 2014-06-06 2019-11-13 Herlev Hospital Bestimmung von antigenerkennung durch barcoding von mhc-multimeren
US9534215B2 (en) 2014-06-11 2017-01-03 Life Technologies Corporation Systems and methods for substrate enrichment
EP3155426B1 (de) 2014-06-13 2023-07-19 Immudex ApS Allgemeiner nachweis und isolierung spezifischer zellen durch binden markierter moleküle
US11155809B2 (en) 2014-06-24 2021-10-26 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital PCR barcoding
KR20170023979A (ko) 2014-06-26 2017-03-06 10엑스 제노믹스, 인크. 핵산 서열 조립을 위한 프로세스 및 시스템
MX2016016902A (es) 2014-06-26 2017-03-27 10X Genomics Inc Metodos para analizar acidos nucleicos de celulas individuales o poblaciones de celulas.
CN106574298A (zh) 2014-06-26 2017-04-19 10X基因组学有限公司 用于样品分析的方法和组合物
US10017759B2 (en) 2014-06-26 2018-07-10 Illumina, Inc. Library preparation of tagged nucleic acid
EP3161162A4 (de) 2014-06-26 2018-01-10 10X Genomics, Inc. Analyse von nukleinsäuresequenzen
US20160024558A1 (en) 2014-07-23 2016-01-28 10X Genomics, Inc. Nucleic acid binding proteins and uses thereof
EP4105337A1 (de) 2014-09-09 2022-12-21 The Broad Institute, Inc. Tröpfchenbasiertes verfahren und vorrichtung zur analyse einer zusammengesetzten einzelligen nukleinsäure
ES2727656T3 (es) 2014-09-15 2019-10-17 Abvitro Llc Secuenciación de alto rendimiento de banco de nucleótidos
AU2015331739B2 (en) 2014-10-17 2021-12-02 Illumina Cambridge Limited Contiguity preserving transposition
CN107002128A (zh) 2014-10-29 2017-08-01 10X 基因组学有限公司 用于靶核酸测序的方法和组合物
CN107110763B (zh) 2014-11-03 2020-12-15 通用医疗公司 分选微流体装置中的颗粒
US9975122B2 (en) 2014-11-05 2018-05-22 10X Genomics, Inc. Instrument systems for integrated sample processing
SG11201705615UA (en) 2015-01-12 2017-08-30 10X Genomics Inc Processes and systems for preparing nucleic acid sequencing libraries and libraries prepared using same
CA2974306A1 (en) 2015-02-04 2016-08-11 The Regents Of The University Of California Sequencing of nucleic acids via barcoding in discrete entities
MX2017010142A (es) 2015-02-09 2017-12-11 10X Genomics Inc Sistemas y metodos para determinar variacion estructural y ajuste de fases con datos de recuperacion de variantes.
AU2016222719B2 (en) 2015-02-24 2022-03-31 10X Genomics, Inc. Methods for targeted nucleic acid sequence coverage
EP3262407B1 (de) 2015-02-24 2023-08-30 10X Genomics, Inc. Partitionsverarbeitungsverfahren und -systeme
US20160289769A1 (en) 2015-03-30 2016-10-06 Verily Life Sciences Llc Methods for Combining Single Cell Profiling with Combinatorial Nanoparticle Conjugate Library Screening and In Vivo Diagnostic System
EP3708256B1 (de) 2015-04-22 2022-11-30 Stilla Technologies Kontaktloses grundierungsverfahren zum laden einer lösung in eine mikrofluidische vorrichtung und zugehöriges system
JP2018518950A (ja) 2015-05-18 2018-07-19 10エックス ジェノミクス, インコーポレイテッド 生物医学的な反応及び分析で使用するための移動固相組成物
WO2016187179A1 (en) 2015-05-18 2016-11-24 10X Genomics, Inc. Stabilized reducing agents and methods using same
WO2016187717A1 (en) 2015-05-26 2016-12-01 Exerkine Corporation Exosomes useful for genome editing
CN107615283B (zh) 2015-05-26 2022-07-05 加利福尼亚太平洋生物科学股份有限公司 用于二倍体基因组组装和单倍型序列重建的方法、软件和系统
US20180087050A1 (en) 2015-05-27 2018-03-29 Jianbiao Zheng Methods of inserting molecular barcodes
EP3314015A1 (de) 2015-06-24 2018-05-02 Oxford Biodynamics Limited Nachweis von chromosominteraktionen
RU2018105835A (ru) 2015-07-17 2019-08-19 Президент Энд Фэллоуз Оф Харвард Коллидж Способы амплификации последовательностей нуклеиновых кислот
US10934636B2 (en) 2015-08-12 2021-03-02 CeMM—FORSCHUNGSZENTRUM FÜR MOLEKULARE MEDIZIN GmbH Methods for studying nucleic acids
WO2017034970A1 (en) 2015-08-21 2017-03-02 The General Hospital Corporation Combinatorial single molecule analysis of chromatin
KR20180085717A (ko) 2015-09-24 2018-07-27 에이비비트로, 엘엘씨 친화성-올리고뉴클레오타이드 콘쥬게이트 및 그것의 사용
FR3042658B1 (fr) 2015-10-15 2017-10-27 Renault Sas Dispositif de gestion thermique d'un groupe motopropulseur electrique.
WO2017075294A1 (en) 2015-10-28 2017-05-04 The Board Institute Inc. Assays for massively combinatorial perturbation profiling and cellular circuit reconstruction
US11092607B2 (en) 2015-10-28 2021-08-17 The Board Institute, Inc. Multiplex analysis of single cell constituents
US20170145476A1 (en) 2015-11-19 2017-05-25 10X Genomics, Inc. Transformable tagging compositions, methods, and processes incorporating same
DK3882357T3 (da) 2015-12-04 2022-08-29 10X Genomics Inc Fremgangsmåder og sammensætninger til analyse af nukleinsyrer
US11965891B2 (en) 2015-12-30 2024-04-23 Bio-Rad Laboratories, Inc. Digital protein quantification
JP6735348B2 (ja) 2016-02-11 2020-08-05 10エックス ジェノミクス, インコーポレイテッド 全ゲノム配列データのデノボアセンブリのためのシステム、方法及び媒体
WO2017139690A1 (en) 2016-02-11 2017-08-17 10X Genomics, Inc. Cell population analysis using single nucleotide polymorphisms from single cell transcriptomes
SG11201807444PA (en) 2016-03-10 2018-09-27 Univ Leland Stanford Junior Transposase-mediated imaging of the accessible genome
US10858699B2 (en) 2016-08-30 2020-12-08 Integrated Dna Technologies, Inc. Cleavable hairpin primers
CN109923216A (zh) 2016-08-31 2019-06-21 哈佛学院董事及会员团体 将生物分子的检测组合到使用荧光原位测序的单个试验的方法
CN109791157B (zh) 2016-09-26 2022-06-07 贝克顿迪金森公司 使用具有条形码化的寡核苷酸序列的试剂测量蛋白质表达
WO2018118971A1 (en) 2016-12-19 2018-06-28 Bio-Rad Laboratories, Inc. Droplet tagging contiguity preserved tagmented dna
WO2018119301A1 (en) 2016-12-21 2018-06-28 The Regents Of The University Of California Single cell genomic sequencing using hydrogel based droplets
US10011872B1 (en) 2016-12-22 2018-07-03 10X Genomics, Inc. Methods and systems for processing polynucleotides
EP4029939B1 (de) 2017-01-30 2023-06-28 10X Genomics, Inc. Verfahren und systeme für eine einzelzellbarcodierung auf tröpfchenbasis
US10844372B2 (en) 2017-05-26 2020-11-24 10X Genomics, Inc. Single cell analysis of transposase accessible chromatin

Also Published As

Publication number Publication date
CN110548550A (zh) 2019-12-10
CN114534806A (zh) 2022-05-27
JP2017514151A (ja) 2017-06-01
IL247934A0 (en) 2016-11-30
BR112016023625A2 (pt) 2018-06-26
AU2023200224A1 (en) 2023-02-16
US10071377B2 (en) 2018-09-11
CN110548550B (zh) 2022-03-08
CA2943624A1 (en) 2015-10-15
EP3129143A4 (de) 2017-04-26
KR20160142883A (ko) 2016-12-13
US20150292988A1 (en) 2015-10-15
DE202015009494U1 (de) 2018-02-08
US20180015473A1 (en) 2018-01-18
AU2020220097B2 (en) 2022-10-27
US10150117B2 (en) 2018-12-11
KR102596508B1 (ko) 2023-10-30
EP3129143A1 (de) 2017-02-15
AU2015243445B2 (en) 2020-05-28
US9694361B2 (en) 2017-07-04
US20190344276A1 (en) 2019-11-14
AU2020220097A1 (en) 2020-09-03
US10343166B2 (en) 2019-07-09
EP4219010A1 (de) 2023-08-02
IL247934B (en) 2021-04-29
EP3129143B1 (de) 2022-11-23
MX2016013156A (es) 2017-02-14
US20180008984A1 (en) 2018-01-11
US20210129148A1 (en) 2021-05-06
CN114534806B (zh) 2024-03-29
US20170348691A1 (en) 2017-12-07
JP6726659B2 (ja) 2020-07-22
WO2015157567A1 (en) 2015-10-15
CN106413896B (zh) 2019-07-05
US10137449B2 (en) 2018-11-27
AU2015243445A1 (en) 2016-10-13
US20180015472A1 (en) 2018-01-18
CN106413896A (zh) 2017-02-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE202015009609U1 (de) Mikrofluidisches System zur Erzeugung von Emulsionen
DE69303898T3 (de) Fluessigkeitsbehandlung in mikrofabrizierten analytischen vorrichtungen
EP1718409B1 (de) Vorrichtung für mikrofluiduntersuchungen
EP3227023B1 (de) Verfahren zur tropfenerzeugung
DE112015007082B4 (de) Zellanalyseeinrichtung, Vorrichtung und ein diese verwendendes Zellanalyseverfahren
WO2012013316A1 (de) Verfahren und vorrichtung zur passiven trennung und sortierung von tropfen, insbesondere in einem mikrofluidischen system, durch verwendung von nicht-optischen markern für reaktionen innerhalb der tropfen
WO2007137722A1 (de) Mikrotiterplatte und deren verwendung
EP2170513A1 (de) Mikro- und nanofluidsystem zur dynamischen strukturanalyse von linearen makromolekülen und anwendungen davon
EP3927842A1 (de) Vorrichtung zur untersuchung einer biologischen probe
DE10201653A1 (de) Oberfläche zur Anlagerung von Biomolekülen

Legal Events

Date Code Title Description
R150 Utility model maintained after payment of first maintenance fee after three years
R082 Change of representative

Representative=s name: BARDEHLE PAGENBERG PARTNERSCHAFT MBB PATENTANW, DE

R150 Utility model maintained after payment of first maintenance fee after three years
R207 Utility model specification
R151 Utility model maintained after payment of second maintenance fee after six years
R152 Utility model maintained after payment of third maintenance fee after eight years