JPWO2011021372A1 - 澱粉ゲル含有食品 - Google Patents
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Abstract
Description
(項目1) 澱粉ゲル含有食品の製造方法であって、
澱粉粒を約10℃以上約70℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程;
食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程;
該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程;および
該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程
を包含し、該酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、方法。
(項目1A) 高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉を含む加熱調理済みの澱粉含有食品であって、
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。
前記酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理小麦澱粉のヤング率の110%以上500%以下(一つの実施形態においては110%以上330%以下)のヤング率または未処理小麦澱粉の破断応力の110%以上300%以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目1Aに記載の食品。
前記酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理タピオカ澱粉のヤング率の110%以上500%以下(一つの実施形態においては110%以上330%以下)のヤング率または未処理タピオカ澱粉の破断応力の110%以上300%以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目1Aに記載の食品。
前記酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理トウモロコシ澱粉のヤング率の110%以上500%以下(一つの実施形態においては110%以上330%以下)のヤング率または未処理トウモロコシ澱粉の破断応力の110%以上300%以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目1Aに記載の食品。
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理小麦澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理小麦澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理小麦澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理小麦澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に5.0×106dyn/cm2以上8.0×106dyn/cm2以下のヤング率または150g以上450g以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理タピオカ澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理タピオカ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理タピオカ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理タピオカ澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に5.2×105dyn/cm2以上2.7×106dyn/cm2以下(一つの実施形態においては5.2×105dyn/cm2以上1.6×106dyn/cm2以下)のヤング率または55g以上150g以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。
該澱粉含有食品は、食品材料と該酵素処理トウモロコシ澱粉とを混合した後に加熱することを含む方法によって製造された食品であり、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理トウモロコシ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に6.0×106dyn/cm2以上9.0×106dyn/cm2以下のヤング率または210g以上450g以下(一つの実施形態においては220g以上450g以下)の破断応力を有するゲルを形成することができる、食品。
食品材料に酵素処理澱粉を添加して混合する工程;および
該混合物を加熱調理する工程
を包含し、
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる、方法。
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理澱粉のヤング率よりも高いヤング率または該未処理澱粉の破断応力よりも高い破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。
前記酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理小麦澱粉のヤング率の110%以上500%以下(一つの実施形態においては110%以上330%以下)のヤング率または未処理小麦澱粉の破断応力の110%以上300%以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目17Aに記載の澱粉。
前記酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理タピオカ澱粉のヤング率の110%以上500%以下(一つの実施形態においては110%以上330%以下)のヤング率または未処理タピオカ澱粉の破断応力の110%以上300%以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目17Aに記載の澱粉。
前記酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に該未処理トウモロコシ澱粉のヤング率の110%以上500%以下(一つの実施形態においては110%以上330%以下)のヤング率または未処理トウモロコシ澱粉の破断応力の110%以上300%以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、項目17Aに記載の澱粉。
該酵素処理小麦澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理小麦澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理小麦澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理小麦澱粉は、レオメータで測定した場合に5.0×106dyn/cm2以上8.0×106dyn/cm2以下のヤング率または150g以上450g以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。
該酵素処理タピオカ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理タピオカ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理タピオカ澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理タピオカ澱粉は、レオメータで測定した場合に5.2×105dyn/cm2以上2.7×106dyn/cm2以下(一つの実施形態においては5.2×105dyn/cm2以上1.6×106dyn/cm2以下)のヤング率または55g以上150g以下の破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理トウモロコシ澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該酵素処理トウモロコシ澱粉は、レオメータで測定した場合に6.0×106dyn/cm2以上9.0×106dyn/cm2以下のヤング率または210g以上450g以下(一つの実施形態においては220g以上450g以下)の破断応力を有するゲルを形成することができる、澱粉。
未処理澱粉の澱粉粒を10℃以上70℃以下の温度において澱粉加水分解酵素で処理する工程を包含し、
該澱粉加水分解酵素は、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼおよび澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼからなる群より選択されるである、方法。
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該澱粉加水分解酵素が、ノボザイムからAMGとして市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、GenencorからOPTIDEX L−400として市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、DANISCOからDIAZYME X4NPとして市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」SDとして市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムAF6として市販されるRhizopus niveus由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるRhizopus oryzae由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ L『アマノ』として市販されるAspergillus niger由来のα−グルコシダーゼ、GenencorからTransglucosidase L−500として市販されるAspergillus niger由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムAとして市販されるAspergillus oryzae由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームLとして市販されるAspergillus oryzae由来のα−アミラーゼ、ダニスコからAMYLEX A3として市販されるAspergillus niger由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームASとして市販されるAspergillus niger由来のα−アミラーゼおよびSigmaからイソアミラーゼとして市販されるPseudomonas amyloderamosa由来のイソアミラーゼからなる群より選択される、澱粉。
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該澱粉加水分解酵素は、配列番号1、3、5、7、9または11の塩基配列の相補配列を有する核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有し、該ストリンジェントな条件は、50%ホルムアミド、5×SSC(750mM NaCl、75mM クエン酸三ナトリウム)、50mM リン酸ナトリウム(pH7.6)、5×デンハルト溶液(0.2% BSA、0.2% Ficoll 400および0.2%ポリビニルピロリドン)、10%硫酸デキストラン、および20μg/ml変性剪断サケ精子DNAを含む溶液中での65℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の0.1〜2倍濃度のSSC溶液(1倍濃度のSSC溶液の組成は、150mM 塩化ナトリウム、15mM クエン酸ナトリウムである)での65℃条件下での洗浄である、澱粉。
該酵素処理澱粉は、澱粉粒が溶解しない条件下で未処理澱粉の澱粉粒を澱粉加水分解酵素で処理することによって得られた澱粉であり、
該酵素処理澱粉は、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されておらず、
該澱粉加水分解酵素は、配列番号2、4、6、8、10または12のアミノ酸配列に対して少なくとも95%以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有する、澱粉。
(1.1 澱粉粒)
本明細書中では、用語「澱粉粒」とは、結晶状の澱粉分子をいう澱粉粒は、未処理の澱粉粒であってもよく、未処理の澱粉粒を化学修飾または物理処理することによって得られる澱粉粒であってもよい。食品として分類される酵素処理澱粉を使用することが好ましい場合には、使用される澱粉粒は、植物から得られた未処理の澱粉粒である。植物は、アミロプラスト内に澱粉分子を顆粒として(すなわち、大きな結晶として)貯蔵する。この顆粒は澱粉粒と呼ばれる。澱粉粒内では、澱粉分子どうしが水素結合などによって結合している。そのため、澱粉粒はそのままでは水に溶けにくく、消化もされにくい。澱粉粒を水とともに加熱すると膨潤し、分子がほぐれてコロイド状になる。この変化は「糊化」と呼ばれる。澱粉粒の大きさおよび形態は、その澱粉粒が得られた植物によって異なる。例えば、トウモロコシの澱粉粒(コーンスターチ)の平均粒径は約12μm〜約15μmであり、他の澱粉粒と比べて小さめで大きさはそろっている。コムギおよびオオムギの澱粉粒は、粒径約20μm〜約40μmの大型の澱粉粒と粒径数μmの小型の澱粉粒の2種の大きさに分かれる。コメではアミロプラスト内に直径数μmの角ばった澱粉小粒が多数蓄積される複粒構造となる。バレイショの澱粉粒は平均粒径約40μmであり、澱粉原料として一般に利用されているものの中では最も大きい。本発明においては、市販されている各種の澱粉粒を使用することが可能である。植物などから澱粉粒を精製するなどの方法により澱粉粒を調製して本発明に使用してもよい。
本発明で使用可能な酵素は澱粉加水分解酵素または糖転移酵素である。澱粉加水分解酵素はα−アミラーゼ、β−アミラーゼ、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、プルラナーゼおよびα−グルコシダーゼに大別される。しかし、同じ酵素(たとえばα−アミラーゼ)に分類される酵素であっても、その生産菌が異なる場合、酵素の反応特異性や基質特異性などの特徴は異なると考えられている。これら澱粉加水分解酵素および糖転移酵素は、動物、微生物、植物に非常に広く分布しているので、澱粉加水分解酵素および糖転移酵素の種類は無限にあるといえる。
澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼは、以下の方法により判別することが出来る。小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え懸濁し、ここに各酵素を添加する。反応により懸濁液中に遊離される還元糖量を測定して分解率を求め、分解率が15%に達したところで澱粉粒をろ過で回収し、水洗し、そして乾燥する。このようにして得られた酵素処理澱粉を用い、レオメータ分析にてヤング率及び破断応力を求める。酵素処理後の澱粉のヤング率または破断応力が、酵素処理前の澱粉のヤング率または破断応力よりも10%以上上昇している場合、当該酵素は澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼと判定される。例として、以下の表1Aに各種澱粉加水分解酵素の判定結果を示す。
乾物換算で20重量%濃度となるように、澱粉糊液を作製し、折幅45mmのクレハロンケーシングに充填する。これを90℃まで1℃/minで昇温し、30分間90℃で保持する。その後、20℃の恒温水槽にて30分間放冷し、続いて冷蔵庫にて5℃まで冷却した。冷却後、5℃で16時間冷蔵保管し、その後室温(約25℃)で4時間放置して室温に戻した後に、レオテック社製レオメータ(RT−2010J−CW)で測定する。レオメータの測定条件は、試験項目として破断試験、試料の高さを25mmとし、粘性用球Φ5(直径5mm、面積19.635mm2)のアダプターを用い、試料の移動速度(破断速度)を6cm/minで測定する。この時、澱粉ゲルの硬さを破断応力(g)およびヤング率(dyn/cm2)で評価する。
本発明の澱粉を製造するためには、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼ、およびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される酵素が使用される。
α−アミラーゼは多くの微生物、動物および植物に存在する。α−アミラーゼを産生する微生物の例としては、Aspergillus属(例えば、Aspergillus oryzae、Aspergillus niger、Aspergillus awamori、Aspergillus flavus、Aspergillus kawachii、Aspergillus sclerotiorumなど)、;Bacillus属(例えば、Bacillus subtilis、Bacillus acidocaldarius、Bacillus amyloliquefaciens、Bacillus stearothermophilus、Bacillus cereus、Bacillus licheniformisなど);Geobacillus属(例えば、Geobacillus stearothermophilus、Geobacillus thermodenitrificans、Geobacillus thermodenitrificansなど);Lactobacillus属(例えばLactobacillus amylovorus、Lactobacillus cellobiosus、Lactobacillus manihotivoransなど);他に、Pseudomonas sp.、Pyrococcus furiosus、Rhizopus microsporus、Thermotoga maritima、Vibrio sp.などが挙げられる。その他に、動物由来のα−アミラーゼは、ヒト膵臓、ヒト唾液、ヒト尿、豚膵臓、ウシ膵臓、コイ腸管などで、植物由来のα−アミラーゼは、大麦、イネ、小麦、オート麦、ライ麦、大豆、ソラマメ中に存在することが確認されている。α−アミラーゼを産生する生物はこれらに限定されない。
アミログルコシダーゼとは、澱粉などの糖鎖の非還元末端の1,4−α結合を加水分解してβ−D−グルコースを生成する酵素をいう。アミログルコシダーゼは、α−1,4−グルコシド鎖を非還元末端から加水分解し、α−1,6−グルコシド鎖も速度は遅いが分解する。アミログルコシダーゼは系統名をグルカン1,4−α−グルコシダーゼという。アミログルコシダーゼは別名を、エキソ−1,4−α−D−グルコシダーゼ、1,4−α−D−グルカングルコヒドロラーゼ、グルコアミラーゼ、γ−アミラーゼ、リソソーマルα−グルコシダーゼまたは酸性マルターゼという。アミログルコシダーゼは、EC3.2.1.3に分類される。
イソアミラーゼとは、アミロペクチン、グリコーゲンなどの分岐点のα−1,6−グルコシド結合を分解してアミロース様直鎖多糖類を生成する酵素をいう。イソアミラーゼは別名を、グリコーゲン6−グルカノヒドロラーゼという。イソアミラーゼは、EC3.2.1.68に分類される。イソアミラーゼは、イソアミラーゼを産生する任意の生物由来であり得る。
α−グルコシダーゼとは、非還元末端のα−1,4−グルコシド結合を加水分解してα−グルコースを生成する酵素をいう。α−グルコシダーゼは系統名をα−D−グルコシドグルコヒドロラーゼという。α−グルコシダーゼは別名をマルターゼ、グルコインベルターゼまたはグルコシドスクラーゼという。α−D−グルコシダーゼは、EC3.2.1.20に分類される。
サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼは、CGTaseとも呼ばれており、EC2.4.1.19に分類される。CGTaseは、マルトオリゴ糖の糖転移反応(すなわち、不均一化反応)を触媒し得る酵素である。CGTaseは、供与体分子の非還元末端の6〜8個のグルコース鎖を認識してこの部分を環状化させるように転移反応を行い、重合度6〜8個のシクロデキストリンと非環状リミットデキストリンとを生成する酵素である。本発明で使用され得るCGTaseの例としては、周知の微生物由来のCGTase、あるいは市販のCGTaseが用いられ得る。CGTaseは、好ましくは、ノボザイムからToruzymeとして市販されるBacillus licheniformis由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ、および天野エンザイムからコンチザイムとして市販されるPaenibacillus macerans(Bacillus maceransとも分類される)由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ(至適pH6.0)からなる群より選択される。
本発明の澱粉を製造する際には、複数種類の澱粉加水分解酵素または糖転移酵素を組み合わせて作用させてもよい。特にα−グルコシダーゼは、単独では澱粉粒と反応しにくいために、α−アミラーゼと併用することが好ましい。
本明細書中では、酵素がある生物に「由来する」とは、その生物から直接単離したことのみを意味するのではなく、その生物が持っている酵素のアミノ酸配列またはそれをコードする塩基配列に基づいて同じアミノ酸配列を有する酵素を別の生物で作製することも意味する。例えば、その生物から入手したその酵素をコードする遺伝子を大腸菌に導入して、その大腸菌から酵素を単離する場合も、その酵素はその生物に「由来する」という。
酵素処理澱粉粒の製造においては、酵素の作用を妨害しない限り、酵素処理において通常用いられる任意の材料が用いられ得る。このような他の材料の例としては、塩、緩衝剤などが挙げられる。一般的に、各酵素に適切な特定の塩を添加することにより酵素反応の速度が飛躍的に向上することが公知であるので、そのような特定の塩を添加することが好ましい。このような各酵素に適切な塩を添加することにより、処理時間の短縮が可能である。このような酵素と塩との組み合わせの例としては、アミログルコシダーゼと金属イオン(例えば、ナトリウムイオン、カリウムイオン、カルシウムイオンまたはマグネシウムイオン)との組み合わせが挙げられる。例えば、本発明者らが実験したところ、未処理の天然のタピオカ澱粉をアミログルコシダーゼ(例えば、Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」)で処理する際に、塩化ナトリウム、または硫酸ナトリウム、または塩化カリウム、または塩化カルシウム、または塩化マグネシウムを、金属イオンとして100ppm添加する系は、添加しない系と比較して澱粉の分解速度が1.5〜2倍速まった。
澱粉粒を澱粉加水分解酵素または糖転移酵素によって処理することにより酵素処理澱粉粒が製造される。それぞれの工程の詳細について以下で説明する。
本発明の製造方法では、例えば、澱粉粒と、澱粉加水分解酵素または糖転移酵素と、緩衝剤と、それを溶かしている溶媒とを主な材料として用いる。これらの材料は通常、反応開始時に全て添加されるが、反応の途中でこれらのうちの任意の材料を追加してもよい。本発明の製造方法に用いる溶媒は、使用される酵素の酵素活性を損なわない溶媒であれば任意の溶媒であり得る。代表的な溶媒は、水(例えば、イオン交換水、精製水、水道水など)である。溶媒は、酵素を調製する際に酵素に付随して得られる細胞破砕液のうちの水分であってもよい。
次いで、反応溶液を、当該分野で公知の方法によって必要に応じて加熱することにより、反応させる。反応工程における溶液温度は、澱粉粒が実質的に崩壊しない温度である限り、任意の温度であり得る。反応温度は、使用する酵素が活性を十分に発揮し得、かつ活性を十分に保持する(すなわち、失活しにくい)温度であることが好ましい。この反応工程における溶液の温度は、所定の反応時間後に反応前のこの溶液に含まれる酵素の活性の約50%以上、より好ましくは約80%以上の活性が残る温度であることが好ましい。例えば、この温度は、使用する酵素の至適温度±10℃であり得、至適温度±5であることがより好ましく、至適温度±1℃であることがさらに好ましく、至適pH±0.5℃であることが最も好ましい。反応温度は、好ましくは約10℃以上であり、より好ましくは約10℃以上であり、さらに好ましくは約15℃以上であり、さらにより好ましくは約20℃以上であり、特に好ましくは約30℃以上であり、そして最も好ましくは40℃以上である。反応温度は、好ましくは約70℃以下であり、より好ましくは約65℃以下であり、特に好ましくは約60℃以下であり、最も好ましくは55℃以下である。
酵素処理を行った澱粉粒は、用途によってはそのまま使用することも可能であるが、酵素処理された澱粉粒を洗浄し、脱水することによって、使用した酵素および酵素分解により溶出した糖質を除去することが好ましい。酵素処理された澱粉粒の洗浄および脱水は、当該分野で公知の任意の方法によって行われ得る。澱粉粒の洗浄および脱水は澱粉調製の常法であり、一般的に行われている。さらに、脱水後の澱粉を乾燥して、目的とする酵素処理澱粉粒を得ることが好ましい。脱水後の澱粉の乾燥は、当該分野で公知の任意の方法によって行われ得る。
酵素処理を行った澱粉粒は、所望により化学修飾され得る。酵素処理に使用した澱粉粒が未処理の澱粉粒または物理処理した澱粉粒の場合だけでなく、何らかの化工澱粉の澱粉粒を使用した場合にも、その化工澱粉に施された種類の化学修飾とは異なる種類の化学修飾を施すことができる。化学修飾の例としては、アセチル化、アジピン酸架橋、酸化、漂白、リン酸架橋、オクテニルコハク酸処理、ヒドロキシプロピル化、リン酸化およびリン酸モノエステル化が挙げられる。これらの化学修飾の方法は当該分野で周知である。これらの化学修飾は、日本国の食品衛生法で許容される範囲内であれば任意の程度まで行われ得る。日本では、化学修飾された加工澱粉が食品添加物として認められるためには、厚生労働省告示485号記載の純度試験法に準じて試料澱粉中の各種化学物質の分析を行って、下記の基準を満たすことが必須である:
(a)アセチル化アジピン酸架橋デンプン:アジピン酸基が0.135%以下であってかつアセチル基が2.5%以下であること;
(b)アセチル化酸化デンプン:アセチル基が2.5%以下であってかつカルボキシ基が1.3%以下であること;
(c)アセチル化リン酸架橋デンプン:アセチル基が2.5%以下であってかつリンがPとして0.14%以下であること;
(d)オクテニルコハク酸デンプンナトリウム:オクテニルコハク酸基が3.0%以下であること;
(e)酢酸デンプン:アセチル基が2.5%以下であること;
(f)酸化デンプン:カルボキシ基が1.1%以下であること;
(g)ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉:ヒドロキシプロピル基が7.0%以下であってかつリンがPとして0.14%以下であること;
(h)ヒドロキシプロピルデンプン:ヒドロキシプロピル基が7.0%以下であること;
(i)リン酸架橋澱粉:リンがPとして0.5%以下であること;
(j)リン酸化デンプン:リンがPとして0.5%以下であること;
(k)リン酸モノエステル化リン酸架橋デンプン:リンがPとして0.5%以下であること;
(l)漂白デンプン;カルボキシ基が0.1%以下であり、厚生労働省告示485号記載の酸化澱粉の「確認試験(3)」による試験結果が陰性で、かつ、粘度等の澱粉の性質に生じた変化が酸化によるものでないことを合理的に説明できること。日本以外の国についてはその国で許容される範囲内であれば任意の程度の化学処理が行われ得る。化学修飾は何種類か組み合わせて使用することができる。
酵素処理を行った澱粉粒は、所望により物理処理され得る。酵素処理に使用した澱粉粒が未処理の澱粉粒または化工澱粉の場合だけでなく、何らかの物理処理をした澱粉粒を使用した場合にも、その物理処理とは異なる種類の物理処理を施すことができる。物理処理の例としては、湿熱処理および熱抑制処理が挙げられる。
特定の実施形態では、本発明の酵素処理澱粉は、高粘度でかつゲル形成能を持つ酵素処理澱粉であって、該酵素処理澱粉は、澱粉粒を約10℃以上約70℃以下の温度において酵素で処理することにより得られた酵素処理澱粉である。
澱粉は、通常、所定以上の水分と共に加熱すると、澱粉粒が膨潤し、透明度の増大、及び粘度上昇という糊化現象を起こすことはよく知られている。そして、さらに加熱を続けることにより、澱粉粒は崩壊する。これら一連の事象にともなう粘度変化を測定するために、いくつかの方法があるが、ブラベンダー社のアミログラフが実用的で広く使用されている。アミログラフは、対象物を所定の速度で加熱し、温度と対象物の粘度との関係を記録するものである。すなわち、加熱とともに澱粉粒は膨潤するが、アミログラフでは粘度の発現および粘度の増大が起こる。やがて、澱粉粒の膨潤が最大になる時に粘度もピークに達する。この粘度を最高粘度という。さらに加熱を続けると、澱粉粒は崩壊し、同時に粘度も低下していく。この粘度低下の度合いをブレイクダウンという。このアミログラフでの粘度曲線は澱粉の起源および製法によって異なり、澱粉の特徴を示す測定法である。
一般に澱粉糊液は所定濃度以上になると、冷却することにより澱粉ゲルを形成することがよく知られている。この澱粉ゲルの物性は粘度同様、澱粉の起源、製法によって異なっており、このゲル化物性の特徴を考慮した上で、様々な食品に使用されている。このゲル物性を測定する方法はいくつか実用化されているが、その1つにレオメータを用いて測定する方法がある。レオメータによるゲル形成能の測定は、例えば、澱粉糊液をケーシングに充填し、加熱後、例えば16時間または21日間(例えば、約5℃で)冷蔵保存し、室温(例えば、約25℃)に戻した後、レオメータでそのゲル物性を測定することにより行われ得る。
本発明の酵素処理澱粉粒が未処理の澱粉、物理処理澱粉または漂白澱粉から調製されかつ化学修飾がされていない場合、本発明の酵素処理澱粉は、人為的な化学処理をされていないため、天然の澱粉(すなわち、未処理澱粉)と比較して、グルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されていない。グルコース残基の2位、3位及び6位の水酸基が修飾されている澱粉とは、工業的なプロセスによりいわゆる化学修飾を受けた加工澱粉(化工デンプンともいう)のことである。平成20年10月1日の厚生労働省告示第485号で告示された食品衛生法施行規則の一部を改正する省令によれば、次の加工デンプン11品目が添加物として取り扱われることになった:
・アセチル化アジピン酸架橋デンプン;
・アセチル化酸化デンプン;
・アセチル化リン酸架橋デンプン;
・オクテニルコハク酸デンプンナトリウム;
・酢酸デンプン;
・酸化デンプン;
・ヒドロキシプロピル化リン酸架橋デンプン;
・ヒドロキシプロピルデンプン;
・リン酸架橋デンプン;
・リン酸化デンプン;
・リン酸モノエステル化リン酸架橋デンプン。厚生労働省告示第485号には、これらのデンプンについての純度試験法が記載されている。よって、例えば、平成20年10月1日の厚生労働省告示第485号記載の上記各種加工澱粉の純度試験方法に準じ、試料澱粉中のアジピン酸基、アセチル基、カルボキシル基などの各種化学物質の分析を行い、比較対象として実施した原料生澱粉での分析結果と比較し、対応する各種化学物質の含有量の増加が見られないことを確認することにより、試料澱粉が化学修飾を受けた澱粉ではないことを判断できる。特に、アジピン酸基の含量、アセチル基の有含量、カルボキシル基の含有量、酢酸ビニルの含有量、オクテニルコハク酸基の含有量、ヒドロキシプロピル基の含有量およびプロピレンクロロヒドリン類の含有量を測定し、これらの含有量が原料生澱粉についてのこれらの含有量よりも増加していないことを確認することにより、試料澱粉が化学修飾を受けた澱粉ではないことを判断できる。アジピン酸基の含量、アセチル基の有含量、カルボキシル基の含有量、オクテニルコハク酸基の含有量、ヒドロキシプロピル基の含有量と、プロピレンクロロヒドリン類の含有量を判断基準とすることが好ましい。また、次亜塩素酸ナトリウムを用いて漂白処理を行った漂白デンプンについては、食品として流通することが認められている。この漂白デンプンも、上記酸化デンプンと同様の純度試験方法にて、カルボキシル基の含有量を測定し、判断することが可能である。上記の11品目の加工デンプン以外の化学修飾加工デンプンについては食品衛生法で認められていないため、食品に使用することができない。そのため、上記11品目以外の化学修飾デンプンは基本的に日本では使用されておらず、流通していない。従って、実用上、本願発明の澱粉についてグルコース残基の2位、3位および6位の水酸基が修飾されていないか否かを確認する際に、上記の化学修飾以外による化学修飾がされていないかを確認する必要はない。
特定の実施形態では、本発明の食品は、澱粉粒を約10℃以上約70℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程;食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程;該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程;および該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程を包含する方法によって製造された食品である。
(1)ベーカリー類:食パン(38.0g)、ハードビスケット(2.6g)、パイ生地(32.0g)、衛生ボーロ(4.5g);
(2)和菓子類:ういろう(54.5g)、くずまんじゅう(45.0g)、大福餅(41.5g);
(3)洋菓子類:スポンジケーキ(32.0g)、カステラ(25.6g)、ホットケーキ(40.0g);
(4)油脂含有食品:ホイップクリーム(乳脂肪タイプ、42.1g)、ホイップクリーム(植物性脂肪タイプ、41.2g)、アイスクリーム類(アイスミルク:65.6g、ラクトアイス:60.4g);
(5)ゲル状食品:カスタードプディング(74.1g);
(6)魚肉、畜肉加工食品:す巻かまぼこ(75.8g)、焼きぬきかまぼこ(72.8g)、ウィンナー(53.0g);
(7)たれ、ソース類:ウスターソース(61.7g)、ミートソース(78.8g)、サウザンアイランドドレッシング(44.1g);および
(8)ゼリーキャンデー類:ゼリーキャンデー(16g)、ゼリービーンズ(9.5g)。
(1)ベーカリー類において、ソフトで、口溶けの良好な食感を付与する。ベーカリー類の例としては、パン、クッキー、ビスケット、ピザ生地、パイ生地、アイスクリームのコーンカップ、モナカの皮、シュークリームの皮などが挙げられる。
特定の実施形態では、本発明の澱粉ゲル含有食品の製造方法は、澱粉粒を約10℃以上約70℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程;食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程;該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程;および該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程を包含する。従来の食品製造においては、食品製造過程で澱粉粒に酵素処理を施して使用することはない。
配列番号1は、Aspergillus oryzae由来のα−アミラーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号2は、Aspergillus oryzae由来のα−アミラーゼのアミノ酸配列である;
配列番号3は、Aspergillus niger由来のα−アミラーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号4は、Aspergillus niger由来のα−アミラーゼのアミノ酸配列である;
配列番号5は、Aspergillus niger由来のアミログルコシダーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号6は、Aspergillus niger由来のアミログルコシダーゼのアミノ酸配列である;
配列番号7は、Flavobacterium sp.由来のイソアミラーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号8は、Flavobacterium sp.由来のイソアミラーゼのアミノ酸配列である;
配列番号9は、Pseudomonas amyloderamosa由来のイソアミラーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号10は、Pseudomonas amyloderamosa由来のイソアミラーゼのアミノ酸配列である;
配列番号11は、Aspergillus niger由来のα−グルコシダーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号12は、Aspergillus niger由来のα−グルコシダーゼのアミノ酸配列である;
配列番号13は、Paenibacillus macerans(Bacillus maceransとも分類される)由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列である;
配列番号14は、Paenibacillus macerans(Bacillus maceransとも分類される)由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼのアミノ酸配列である。
粘度を以下の方法で測定した。乾物換算で小麦澱粉は8.5重量%濃度、コーンスターチは7.0重量%濃度、タピオカ澱粉は6.0重量%濃度となるように、450mlの水で、澱粉懸濁液を調整し、試料容器に投入後、それらを回転させながら50℃まで加温した。その後1.5℃/minで95℃まで昇温し、95℃で15分間保持した。続いて1.5℃/minで冷却した。アミログラフはブラベンダー社製のVISCOGRAPH−E、また試料容器の回転数は75rpm、測定カートリッジは700cmgで測定した。この時、粘度がピークに達した時の粘度を最高粘度とし、そして、この最高粘度と95℃にて15分間保持した時の粘度の差をブレイクダウンとした。
ゲル物性を以下の方法で測定した。乾物換算で20重量%濃度となるように、澱粉糊液を作成し、折幅45mmのクレハロンケーシングに充填した。これを90℃まで1℃/minで昇温し、30分間90℃で保持した。その後、20℃の恒温水槽にて30分間放冷し、続いて冷蔵庫にて5℃まで冷却した。冷却後、5℃で16時間冷蔵保管し、その後室温(約25℃)で4時間放置して室温に戻した後に、レオテック社製レオメータ(RT−2010J−CW)でゲル物性を測定した。また、レオメータの測定条件は、試験項目として破断試験、試料の高さを25mmとし、粘性用球Φ5(直径5mm、面積19.635mm2)のアダプターを用い、試料の移動速度(破断速度)を6cm/minで測定した。この時、澱粉ゲルの硬さを破断応力(g)、ヤング率(dyn/cm2)で評価した。
澱粉粒の分解率を以下の方法で測定した。酵素反応後の澱粉分解懸濁液を遠心分離(3000rpm、5分間)して得た上清液に含まれる遊離した還元糖の量(g)をフェノール‐硫酸法により測定した。遊離した還元糖の量の、酵素反応前の澱粉総量(g)に対する百分率を求めた。
1.液体反応
未処理の天然の小麦澱粉15g(乾燥重量)にイオン交換水250g加え、pH5.0に調整後、沸騰湯浴にて加温し、完全に澱粉が溶解した糊液を調製した。この糊液に、α−アミラーゼ(Aspergillus oryzae起源)を0.1重量%(対澱粉固形分)添加し、総重量300gに調整し、50℃で撹拌することにより酵素反応を行った。30分後、沸騰湯浴中に10分間放置し、酵素を失活させ、試料1とした。得られた試料1を用い、ゲル物性を測定し、破断応力とヤング率で評価した。
未処理の天然の小麦澱粉400g(乾燥重量)にイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調製した後、α−アミラーゼ(Aspergillus oryzae起源)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。この酵素処理澱粉15g(乾燥重量)にイオン交換水を加え、総重量300gに調整した。これを、沸騰湯浴にて加温し、完全に澱粉が溶解した糊液、試料2を調製した。得られた試料2を用い、ゲル物性を測定し、破断応力とヤング率で評価した。
未処理の天然の小麦澱粉に酵素処理を施さずに、アミログラフ及びレオメータにより粘度特性を分析した。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus orysae由来、天野エンザイム(株)製「ビオザイムA」;至適pH5.0)を0.1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で1時間撹拌し、酵素反応を行い、分解率5%前後(実施例1−1)の試料を調製した。また、同様の酵素量を用い、50℃で3時間撹拌し、分解率10%前後(実施例1−2)の試料を調製した。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液を使用して分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus orysae由来、天野エンザイム(株)製「ビオザイムA」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液を使用して分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、新日本化学工業(株)製「スミチーム AS」;至適pH4.5)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Bacillus subtilis由来、HBI社製「α−アミラーゼ3A」;至適pH5.9;比較例2)、α−アミラーゼ(Bacillus subtilis由来、Novo社製「ノバミル」;至適pH5.0;比較例3)、α−アミラーゼ(Bacillus amyloliquefaciens由来、シグマアルドリッチ社製「αアミラーゼ」;至適pH6.0;比較例4−3)、α−アミラーゼ(Bacillus licheniformis由来、Novo社製「ターマミル120L」;至適pH6.0;比較例5)、またはα−アミラーゼ(Bacillus sp.由来、Novo社製「マルトゲナーゼ L」;至適pH5.0;比較例6)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Bacillus amyloliquefaciens由来、シグマアルドリッチ社製「αアミラーゼ」;至適pH6.0)を0.01重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で30分間撹拌し、分解率5%前後の試料を調製した。また、同様の酵素量を用い、50℃で1.5時間撹拌し、分解率10%前後の試料を調製した。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、ノボザイムズ社製「AMG」;至適pH4.5)を0.1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃2時間撹拌し、分解率5%前後(実施例3A−1)の試料を調製した。また同様の酵素を0.5重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で3時間撹拌し、分解率10%前後(実施例3A−2)の試料を調製した。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、ノボザイムズ社製「AMG」;至適pH4.5)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「DIAZYME X4NP」;至適pH4.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、天野エンザイム株式会社製「グルコアミラーゼ『アマノ』SD」;至適pH4.5)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Rhizopus niveus由来、天野エンザイム社製「グルクザイムAF6」;至適pH4.5)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0にpHを調整した後、アミログルコシダーゼ(Rhizopus oryzae由来、新日本化学工業株式会社製「スミチーム」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Candida tsukubaensis由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」;至適pH2.5)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、イソアミラーゼ(Pseudomonas amyloderamosa由来、シグマアルドリッチ製「試薬」;至適pH3.0)を0.1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−グルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、天野エンザイム株式会社製「トランスグルコシダーゼL『アマノ』」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−グルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「Transglucosidase L−500」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、β−アミラーゼ(大麦由来、Genencor製「OPTIMALT BBA」;至適pH5.0)またはプルラナーゼ(Klebsiella pneumoniae由来、天野エンザイム株式会社製「プルラナーゼ」;至適pH6.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
コーンスターチに酵素処理を施さずに、アミログラフ及びレオメータにより粘度特性を分析した。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0にpHを調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus orysae由来、天野エンザイム(株)製「ビオザイムA」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Bacillus amyloliquefaciens由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」;至適pH6.0)を0.01重量%(対澱粉固形分)(比較例13−1)添加し、50℃で30分間撹拌したか、または1重量%(対澱粉固形分)(比較例13−2)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、ノボザイムズ社製「AMG」;至適pH4.5)を0.5重量%(対澱粉固形分)(実施例7−2)添加し、50℃で3時間撹拌したか、または1重量%(対澱粉固形分)(実施例7−2)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、β−アミラーゼ(大麦由来、Genencor社製「OPTIMALT BBA」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、イソアミラーゼ(Pseudomonas amyloderamosa由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」;至適pH3.0)を0.1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−グルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、天野エンザイム株式会社製「トランスグルコシダーゼL『アマノ』」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉に酵素処理を施さずに、アミログラフ及びレオメータにより粘度特性を分析した。結果を表4−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus orysae由来、天野エンザイム(株)製「ビオザイムA」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表4−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Bacillus amyloliquefaciens由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」;至適pH6.0)を0.01重量%(対澱粉固形分)(比較例16−1)添加し、50℃で30分間撹拌したか、または1.0重量%(対澱粉固形分)(比較例16−2)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表4−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、ノボザイムズ社製「AMG」;至適pH4.5)を0.5重量%(対澱粉固形分)(実施例10−1)添加し、50℃で3時間撹拌、または1重量%(対澱粉固形分)(実施例10−2)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表4−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、β−アミラーゼ(大麦由来、Genencor社製「OPTIMALT BBA」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表4−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、イソアミラーゼ(Pseudomonas amyloderamosa由来、シグマアルドリッチ社製「試薬」;至適pH3.0)を0.1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表4−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−グルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、天野エンザイム株式会社製「トランスグルコシダーゼL『アマノ』」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。
(Aspergillus oryzae由来のα−アミラーゼの調製方法)
配列表の配列番号1の塩基配列の両末端にEcoRI認識部位(GAATTC)を加えて、2本鎖DNAを化学合成した。この合成DNAを制限酵素EcoRIで完全分解した後、あらかじめEcoRIで完全分解したpYCDE1(Method in Enzymology,101,pp.192〜201(1983))と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌TG1を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドpYAMY1を調製した。
(Aspergillus niger由来のα−アミラーゼの調製方法)
配列表の配列番号3の塩基配列の両末端にEcoRI認識部位(GAATTC)を加えて、2本鎖DNAを化学合成した。この合成DNAを制限酵素EcoRIで完全分解した後、あらかじめEcoRIで完全分解したpYCDE1(Method in Enzymology,101,pp.192〜201(1983))と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌TG1を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドpYAMY2を調製した。
(Aspergillus niger由来アミログルコシダーゼの調製方法)
配列表の配列番号5の塩基配列の両末端にEcoRI認識部位(GAATTC)を加えて、2本鎖DNAを化学合成した。この合成DNAを制限酵素EcoRIで完全分解した後、あらかじめEcoRIで完全分解したpYCDE1(Method in Enzymology,101,pp.192〜201(1983))と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌TG1を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドpYGLU1を調製した。
(Flavobacterium sp.由来イソアミラーゼの調製方法)
配列表の配列番号7の塩基配列の両末端にEcoRI認識部位(GAATTC)を加えて、2本鎖DNAを化学合成した。この合成DNAを制限酵素EcoRIで完全分解した後、あらかじめEcoRIで完全分解したpYCDE1(Method in Enzymology,101,pp.192〜201(1983))と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌TG1を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドpYISO1を調製した。
(Pseudomonas amyloderamosa由来イソアミラーゼの調製方法)
配列表の配列番号9の塩基配列の両末端にEcoRI認識部位(GAATTC)を加えて、2本鎖DNAを化学合成した。この合成DNAを制限酵素EcoRIで完全分解した後、あらかじめEcoRIで完全分解したpYCDE1(Method in Enzymology,101,pp.192〜201(1983))と混合し、ライゲーションを行った。ライゲーション反応液で大腸菌TG1を形質転換し、合成遺伝子が正しく導入された形質転換体を選択した。この形質転換体が保持するプラスミドpYISO2を調製した。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、実施例12Aにて調製したα−アミラーゼ(Aspergillus orysae由来)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液を使用して分解率を求めた。結果を以下の表5−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、実施例12Bにて調製したα−アミラーゼ(Aspergillus niger由来)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表5−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、実施例12Cにて調製したアミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表5−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、実施例12Dにて調製したイソアミラーゼ(Flavobacterium sp.由来)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表5−2に示す。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、実施例12Eにて調製したイソアミラーゼ(Pseudomonas amyloderamosa由来)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を以下の表5−2に示す。
次に、本発明を試作例により詳しく説明するが、本発明はこれらの試作例によって限定されるものではない。また、特に記載のない限り、「部」とは「質量部」を意味するものとする。
下記表10に掲げる処方の内、ミキサーに、無塩バター、ショートニングを加えよく混ぜ合わせた。更に、上白糖、食塩を加えよく混ぜ合わせた後、予め水に溶解した炭酸水素アンモニウムを加えよく混ぜ合わせた。最後に、予め混合した薄力粉及び澱粉及び重曹(炭酸水素ナトリウム)の粉体試料を加え、生地の塊(ドウ)が形成されるまでよく混ぜ合わせた。生地の塊(ドウ)を麺棒で薄く伸ばし、型抜きをして、オーブンにて(200℃下15分間)焼成し、クッキーを調製した。
下記表11に掲げる処方の内、全卵とグラニュー糖をハンドミキサーで混ぜ合わせながら、人肌程度にまで温めた。更に、粘度が出、且つ、気泡が細かく全体が白っぽい状態になるまでハンドミキサーで撹拌した。そこへ、予め混合した薄力粉及び澱粉及び小麦グルテンの粉体試料を篩い入れ、へらで混ぜ合わせた。最後に、溶かしバターと牛乳の混合したものを混ぜ合わせた。型に流し込み、オーブンにて(200℃下15分間、加えて190℃下18分間)焼成し、スポンジケーキを調製した。
下記表12に掲げる処方の内、泡立て器でよくすり混ぜた卵黄に、グラニュー糖を加え、更に泡立て器で混ぜ合わせた。そこへ、予め混合した薄力粉及び澱粉の粉体試料を篩い入れ、混ぜ合わせた。更に温めた牛乳を加え混ぜ合わせたら、鍋に濾し入れ、加熱した。粘度が出て滑らかな状態になるまで、木べらで掻き混ぜた。最後に、バター、色素、バニラエッセンスを加え、混ぜ合わせて、カスタードクリームを調製した。
下記表13に掲げる処方の内、牛乳にグラニュー糖を加え、木べらでよく混ぜ合わせグラニュー糖を溶かした。そこへ澱粉試料を加え、木べらでよく混ぜ合わせた。木べらで掻き混ぜながら、粘度が出て滑らかな状態になるまで加熱した。ゼリーカップに充填し、氷浴にて急冷し、ミルクプリンを調製した。
下記表14に掲げる処方の内、澱粉試料と上白糖の混合物を水に加え、木べらでよく混ぜ合わせ上白糖を溶かした。木べらで掻き混ぜながら、粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱した。型に流し入れ、氷浴にて急冷し、くず餅を調製した。
下記表15に掲げる処方の内、澱粉試料を水に加え、木べらで掻き混ぜながら、粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱した。練りごまを加えてよく混ぜ合わせた。容器に充填し、冷却し、ごま豆腐を調製した。
下記表16に掲げる処方の内、(サイレント)ミキサーに、すり身、食塩、砂糖、グルタンミン酸ナトリウム、ソルビン酸カリウムを加え、粘りが出るまでよく混ぜ合わせた。すり身の温度上昇抑制のため、氷水半量を入れ、混ぜ合わせ、卵白、味醂、予め残りの氷水で溶いておいた澱粉を加え均一になるまで、よく混ぜ合わせた。混ぜ合わせ後のすり身の温度は10〜15℃が目安であった。混ぜ合わせたすり身を脱気し、ケージに充填した。充填後、殺菌工程(90℃40分間)を取り、冷却し、かまぼこを調製した。
下記表17に掲げる処方の内、澱粉試料を予め水の一部に溶いておいた。鍋に、上白糖、濃口醤油、味醂、水飴、残りの水を全量加え、木べらでよく混ぜ合わせた。更に、予め水溶きしておいた澱粉試料を加え、木べらで掻き混ぜながら加熱した。粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱し、みたらし団子のたれを調製した。
下記表18に掲げる処方の内、澱粉試料を予め水の一部に溶いておいた。鍋に、フルーツピューレ、上白糖、レモン果汁及び残りの水を全量加えた。木べらで掻き混ぜながら加熱し、予め水溶きしておいた澱粉試料を加えた。粘度が出て糊状になり、かつ、透明感のある状態になるまで加熱し、フルーツソースを調製した。
下記表19に掲げる処方の内、予め粉体混合しておいた上白糖及び澱粉試料を水に加え、90℃で10分間加熱撹拌した。醸造酢、食塩、レモン果汁、グルタミン酸ナトリウム他調味料を加え、更に5分間加熱撹拌した。室温にまで冷却した後、卵黄を加えよく混ぜ合わせた。特殊機化工業(現:プライミクス)社製のホモミキサーを使用し、8,000rpmで撹拌混合しながらサラダ油をゆっくりと滴下し、全量滴下後、続けて8,000rpmで5分間撹拌混合し、ドレッシングを調製した。
下記表20に掲げる処方の内、予め粉体混合しておいた薄力粉及び澱粉試料を冷水に溶き、よく混ぜ合わせ、揚げ物用バッターを調製した。
下記表21に掲げる処方の内、豚うで肉をサイレントカッターに入れ、高速でカッティングしながら、カゼインナトリウム、食塩、上白糖、調味料、総合塩漬剤、ポークパウダー、香辛料、ソルビン酸カリウム、pH調整剤、色素を加え、よく混ぜ合わせた。ペースト状になれば、氷水及び豚脂を加え、カッティングを続けた。最後に、澱粉試料を加え、よく混ぜ合わせ、均一なペーストにした。ケーシングに充填し、80℃にて40分間殺菌を行なった。流水で冷却しソーセージを調製した。
下記表22に掲げる処方に準じ、澱粉、中力小麦粉と粉末グルテンを下記の割合で混合した粉に、食塩2部を水40部に溶解した捏ね水を加え、真空ミキサーで12分間混練した。その後製麺機を用いて複合・圧延を行い麺帯とし、切り歯10番を用いて裁断し生うどんを得た。
下記表23に掲げる処方に準じ、砂糖、水飴、澱粉と水を下記の割合で撹拌混合しながら、Bx(ブリックス)75まで加熱溶解した。得られた溶液を鋳型に充填し、常温で24時間放置する。固化を確認後、鋳型から取り出し、ゼリーキャンデーを得た。
下記表24に掲げる処方に準じ、原料と水を下記の割合で撹拌混合しながら、Bx(ブリックス)40まで加熱溶解した。得られた溶液をアイスクリーマー装置に投入し、35分間冷却撹拌を行った。得られた生地を、容器に移し、冷凍保存し、冷菓を得た。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ(Bacillus licheniformis由来、Novo社製「Toruzyme 3.0L」;至適pH6.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。この結果、セットバック粘度は、7.0(BU)であった。
未処理の天然の小麦澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH6.0に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ(Paenibacillus macerans(Bacillus macerans)由来、天野エンザイム製「コンチザイム」)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表2−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ(Bacillus licheniformis由来、Novo社製「Toruzyme 3.0L」;至適pH6.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表3−2に示す。この結果、セットバック粘度は、0(BU)であった。
未処理の天然のタピオカ澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、サイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ(Bacillus licheniformis由来、Novo社製「Toruzyme 3.0L」;至適pH6.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。結果を表4−2に示す。この結果、セットバック粘度は、2(BU)であった。
未処理の天然のタピオカ澱粉500gに、6.7%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液750gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH8.5に調整した後、酢酸ビニルモノマー7.36gを添加し、30℃で40分間撹拌することにより反応を行った。40分後、懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酢酸澱粉を回収した。得られた酢酸澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
未処理の天然のタピオカ澱粉500gに、11%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液785gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、プロピレンオキサイド24gを添加し、42℃で16時間撹拌することにより反応を行った。16時間後、懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
未処理の天然のタピオカ澱粉500gに、6.7%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液750gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、オキシ塩化リン10μlを添加し、30℃で1時間撹拌することにより反応を行った。1時間後、懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、リン酸架橋澱粉を回収した。得られたリン酸架橋澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
未処理の天然のタピオカ澱粉500gに、10%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液910gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、プロピレンオキサイド16gを添加し、42℃で16時間撹拌することによりエーテル化反応を行った。16時間後、懸濁液の澱粉懸濁液を30℃に調整し、オキシ塩化リン5μl添加し、30℃で1時間撹拌することにより架橋反応を行った。1時間後、pHを6.0に調整し、全ての反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
未処理の天然のタピオカ澱粉4kgにイオン交換水9kgを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。なお、本試料の分解率は、21%であった。
比較例18で調製した酢酸澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例18で調製した酢酸澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例19で調製したヒドロキシプロピル澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例19で調製したヒドロキシプロピル澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例20で調製したリン酸架橋澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例20で調製したリン酸架橋澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例21で調製したヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例21で調製したヒドロキシプロピル化リン酸架橋澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
実施例16で調製した酵素処理澱粉500gに、6.7%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液750gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH8.5に調整した後、酢酸ビニルモノマー7.36gを添加し、30℃で40分間撹拌することにより反応を行った。40分後、懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酢酸酵素処理澱粉を回収した。得られた酢酸酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
実施例16で調製した酵素処理澱粉500gに、11%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液785gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、プロピレンオキサイド24gを添加し、42℃で16時間撹拌することにより反応を行った。16時間後、懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル酵素処理澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
実施例16で調製した酵素処理澱粉500gに、6.7%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液750gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、オキシ塩化リン10μlを添加し、30℃で1時間撹拌することにより反応を行った。1時間後、懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、リン酸架橋酵素処理澱粉を回収した。得られたリン酸架橋酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
実施例16で調製した酵素処理澱粉500gに、10%(w/w)硫酸ナトリウム水溶液910gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、プロピレンオキサイド16gを添加し、42℃で16時間撹拌することによりエーテル化反応を行った。16時間後、澱粉懸濁液を30℃に調整し、オキシ塩化リンを5μl添加し、30℃で1時間撹拌することによりし、架橋反応を行った。1時間後、懸濁液のpHを6.0に調整し、全ての反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、ヒドロキシプロピル化リン酸架橋酵素処理澱粉を回収した。得られたヒドロキシプロピル化リン酸架橋酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
未処理の天然のタピオカ澱粉500gに、イオン交換水750gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH10.0に調整した後、有効塩素量10%の次亜塩素酸ナトリウムを2.5g添加し、懸濁液のpHをpH10.0に保持しながら、30℃で2時間撹拌することにより反応を行った。2時間後、懸濁液のpHを6.0に調整し、続いて、亜硫酸水素ナトリウムを2g添加し、攪拌後、直ちに懸濁液のpHをpH6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酸化澱粉を回収した。得られた酸化澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
未処理の天然のタピオカ澱粉500gに、イオン交換水700gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH11.0に調整した後、有効塩素量10%の次亜塩素酸ナトリウムを2.5g添加し、懸濁液のpHをpH11に保持しながら、30℃で5分間撹拌し、続いて、メタ重亜硫酸ナトリウムを0.25g添加し、10分間攪拌し、その後懸濁液のpHを6.0に調整し、反応を停止させた。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、漂白澱粉を回収した。得られた漂白澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。
比較例22で調製した酸化澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例22で調製した酸化澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例23で調製した漂白澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例23で調製した漂白澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。得られた酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。比較例22〜23および実施例29〜32の測定結果を表25−2に示す。
未処理の天然のコーンスターチ2kgにイオン交換水を加え、水分含量21%に調整し、それをできる限り空所の無い状態で3Lガラスビーカーに詰め、上部をアルミ箔で覆った後、120℃で15分間加熱することにより湿熱処理を行った。湿熱処理終了後、送風乾燥し、湿熱処理澱粉を回収した。
未処理の天然のコーンスターチ4kgにイオン交換水9kgを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。なお、本試料の分解率は、34%であった。
未処理の天然のコーンスターチ4kgにイオン交換水9kgを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、酵素処理澱粉を回収した。なお、本試料の分解率は、28%であった。
比較例24で調製した湿熱処理澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、アミログルコシダーゼ(Aspergillus niger由来、Genencor製「OPTIDEX L−400」;至適pH4.4)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
比較例24で調製した湿熱処理澱粉400gにイオン交換水900gを加え、澱粉懸濁液を調製した。懸濁液のpHをpH5.0に調整した後、α−アミラーゼ(Aspergillus niger由来、DANISCO社製「AMYLEX A3」;至適pH5.0)を1重量%(対澱粉固形分)添加し、50℃で18時間撹拌することにより酵素反応を行った。反応終了後、遠心濾過、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
実施例33で調製した酵素処理澱粉400gにイオン交換水を加え、水分含量21%に調整し、それをできる限り空所の無い状態で1Lガラスビーカーに詰め、上部をアルミ箔で覆った後、120℃で15分間加熱することにより湿熱処理を行った。湿熱処理終了後、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。
実施例34で調製した酵素処理澱粉400gにイオン交換水を加え、水分含量20%に調整し、それをできる限り空所の無い状態で1Lガラスビーカーに詰め、上部をアルミ箔で覆った後、120℃で15分間加熱することにより湿熱処理を行った。湿熱処理終了後、送風乾燥し、湿熱酵素処理澱粉を回収した。得られた湿熱酵素処理澱粉の粘度特性をアミログラフ及びレオメータにて分析した。また、反応終了後、一部の反応液より分解率を求めた。比較例24および実施例35〜38の測定結果を表26−2に示す。
Claims (18)
- 澱粉ゲル含有食品の製造方法であって、
澱粉粒を約10℃以上約70℃以下の温度において酵素で処理して酵素処理澱粉を得る工程;
食品材料と該酵素処理澱粉と水とを混合して混合物を得る工程;
該混合物を加熱して該混合物中の該酵素処理澱粉を糊化する工程;および
該糊化した酵素処理澱粉を含む混合物を冷却してゲル化させて澱粉ゲル含有食品を得る工程
を包含し、該酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、澱粉のゲル形成能を向上させる特性を有するα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、方法。 - 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Aspergillus属由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Aspergillus oryzae由来のα−アミラーゼ、Aspergillus niger由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、ノボザイムからAMGとして市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、GenencorからOPTIDEX L−400として市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、DANISCOからDIAZYME X4NPとして市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルコアミラーゼ「アマノ」SDとして市販されるAspergillus niger由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからグルクザイムAF6として市販されるRhizopus niveus由来のアミログルコシダーゼ、新日本化学工業からスミチームとして市販されるRhizopus oryzae由来のアミログルコシダーゼ、天野エンザイムからトランスグルコシダーゼ L『アマノ』として市販されるAspergillus niger由来のα−グルコシダーゼ、GenencorからTransglucosidase L−500として市販されるAspergillus niger由来のα−グルコシダーゼ、天野エンザイムからビオザイムAとして市販されるAspergillus oryzae由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームLとして市販されるAspergillus oryzae由来のα−アミラーゼ、ダニスコからAMYLEX A3として市販されるAspergillus niger由来のα−アミラーゼ、新日本化学工業からスミチームASとして市販されるAspergillus niger由来のα−アミラーゼ、Sigmaからイソアミラーゼとして市販されるPseudomonas amyloderamosa由来のイソアミラーゼ、ノボザイムからToruzymeとして市販されるBacillus licheniformis由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼ、および天野エンザイムからコンチザイムとして市販されるPaenibacillus macerans(Bacillus macerans)由来のサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、(1)配列番号1、3、5、7、9または11の塩基配列に相補的な塩基配列からなる核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ澱粉加水分解活性を有するか、または(2)配列番号13の塩基配列に相補的な塩基配列からなる核酸分子とストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸分子によってコードされ、かつ糖転移活性を有し、ここで、該ストリンジェントな条件は、50%ホルムアミド、5×SSC(750mM NaCl、75mM クエン酸三ナトリウム)、50mM リン酸ナトリウム(pH7.6)、5×デンハルト溶液(0.2% BSA、0.2% Ficoll 400および0.2%ポリビニルピロリドン)、10%硫酸デキストラン、および20μg/ml変性剪断サケ精子DNAを含む溶液中での65℃でのハイブリダイゼーション、およびその後の0.1〜2倍濃度のSSC溶液(1倍濃度のSSC溶液の組成は、150mM 塩化ナトリウム、15mM クエン酸ナトリウムである)での65℃条件下での洗浄である、請求項1に記載の方法。
- 前記酵素が、(1)配列番号2、4、6、8、10または12のアミノ酸配列に対して少なくとも95%以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ澱粉加水分解活性を有するか、または(2)配列番号14のアミノ酸配列に対して少なくとも95%以上の相同性を有するアミノ酸配列を有しかつ糖転移活性を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記澱粉粒が、未処理澱粉、物理処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒である、請求項1に記載の方法。
- 前記澱粉粒が未処理澱粉の澱粉粒であり、該澱粉粒が前記方法により澱粉ゲル含有食品を得るまでのいずれの段階においても化学修飾も、物理処理もされない、請求項1に記載の方法。
- 前記澱粉粒が未処理澱粉または物理処理澱粉の澱粉粒であり、前記酵素処理澱粉を化学修飾する工程をさらに包含し、該化学修飾した酵素処理澱粉を前記食品材料および水と混合する、請求項1に記載の方法。
- 前記澱粉粒が未処理澱粉または化学修飾澱粉の澱粉粒であり、前記酵素処理澱粉を物理処理する工程をさらに包含し、該物理処理した酵素処理澱粉を前記食品材料および水と混合する、請求項1に記載の方法。
- 請求項1に記載の方法によって製造される、澱粉ゲル含有食品。
- 前記食品が高水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部100gあたり40gより高く95gより低い、請求項11に記載の食品。
- 前記食品が、和菓子類、油脂含有食品、ゲル状食品、魚肉・畜肉加工食品、たれ・ソース類および麺類からなる群より選択される、請求項11に記載の食品。
- 前記食品が低水分系の食品であり、該食品の水分量が、可食部100gあたり1g以上40g以下である、請求項11に記載の食品。
- 前記食品が、ベーカリー類、洋菓子類およびフライ食品からなる群より選択される、請求項11に記載の食品。
- 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Aspergillus属由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、請求項11に記載の食品。
- 前記酵素が、アミログルコシダーゼ、イソアミラーゼ、α−グルコシダーゼ、Aspergillus oryzae由来のα−アミラーゼ、Aspergillus niger由来のα−アミラーゼおよびサイクロデキストリングルカノトランスフェラーゼからなる群より選択される、請求項11に記載の食品。
- 前記澱粉がタピオカ、トウモロコシまたは小麦に由来する、請求項11に記載の食品。
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