JPS5890514A - ヒト免疫インターフエロンをコートするdna配列 - Google Patents

ヒト免疫インターフエロンをコートするdna配列

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JPS5890514A
JPS5890514A JP57182681A JP18268182A JPS5890514A JP S5890514 A JPS5890514 A JP S5890514A JP 57182681 A JP57182681 A JP 57182681A JP 18268182 A JP18268182 A JP 18268182A JP S5890514 A JPS5890514 A JP S5890514A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は組換DNA技術の領゛域に係る・本発明は、前
記の如き技術を利用するヒト免疫インターフェロンのD
NA配列及びそれから慎重推定されるアミノ酸の解析手
段及び方法に係り、更に前記インターフェロンの製法及
びこの製法により産生される種々の産生物及びそれらの
用途に係る。
より詳細には本発明は、ヒト免疫インターフェロンをコ
ードするDNA配列の単−及び同定、前記の如きDNA
配列を発現プロモーター配列に有効に発現し得るように
(正しく読みとられるようeζ)結合させて得られる組
換DNム発机ベヒクルの構成並びに前記の如く構成され
る発現ベヒクルに係る。本発明は更に、前記の如き発現
ベヒクルで形質転換され従って前記DNA配列を発現し
得る培養系、例えば檀々の微生物及びを椎動物#l胞培
11(セルカルチャー)に係る。更に一本発明は、前記
の如く発現した目的産生物をヒトの予防処置又は治療処
置に有用な新規な完全体例えば薬剤に転換する手段及び
方法に係る1、好ましい具体例によれば本発明は、ヒト
免疫インターフェロンが成熟し友形態で宿主細胞から分
泌されるように正当に結合された特定の発現ベヒクルを
提供する。史に本発明は、前記DNA配列、発現ベヒク
ル、宿主培養系、目的産生物及び該麓生物i含む完全体
の製造に有用な種々の方法並びに対応するそれらの特定
具体例に係る。
本発明は、部分的には、ヒト免疫インターフェロンをコ
ードするDNA配列及びそれから推定される構成アミノ
酸配列を知見し良ことf:;t/Agとする。更に本発
明は、ヒト免疫インターフェロン遺伝子の3′−及び5
′−フランキング(flankj曜)配列に関する配列
情報を提供し、その結果、該配列をインビトロ(in 
vltro )で@現ベヒクルへ結合することが容易に
なる。本発明は、特に、所−成熟ヒト免疫インターフェ
ロンのアミノ酸配列の、1繭に位置する所謂内因性(*
ntlog*noum )シグナルポリベグテドをコー
ドする5’−DNAセグメントを提供する。これらの知
見に基いて、組換DNム技暫を用いるととにより十分な
量のヒト免疫インターフェロンの産生手段及び方法の開
発が次第に可能となり、従′つてこの物質の生化学的特
性及び生物活性の測定も可能になった。
本発明のバックグラウンドを明らかにし且つ特定の場合
には本発明の実施に関する詳細を補なう目的で、本文中
に多くの刊行物及び学術論文を参考として引用した。便
宜上1.これらの参考文献に参照番号を付し、目録とし
て本明M4F末尾に添付した。本文中では参考文献を参
照番号で示す。
抗原性、生物学的%性、生化学的特性の違いに基いてヒ
トインターフェロンを3グループに分類し得る。
第1グループは白血球インターフェロン(α−インター
フェロン、ムIF又はIFN−α)@である。このグル
ープのインターフェロンは、通常、ヒト血液の成分細胞
のウィルス誘発によって主として産生ずる。α−インタ
ーフェロンは、既ニ、微生物で産生され、生物学的に活
性であることが知見され(&に記参考鳥献1.2及び3
参煕、以)同じ)、ウィルス感染往及び悪性朧命状態の
治療薬としての臨床使用が促進されている(4゜第2グ
ループはヒト騨維芽細胞インターフェロン(I−インタ
ーフェロン、 F’IiF又tiIFN−1)である。
このグループのインターフェロン#マ、通常、繊維芽細
胞のウィルス誘発によって産生ずる。
!−イン!−フエ四ンも同じく値生物で産生され、広い
範囲の生物学的活性を示すことが知見された(5)。臨
床試験もβ−インターフェロンの潜在的治療価値を示唆
している。
白血球インターフェロンと線維芽細胞インターフェロン
は、アミノ酸レベルでの相同(homology)の程
度が比較的低いにもかかわらず、生物学的特性が極めて
類似している 更に、これらのインターフェロンはいず
れも、165乃至166イ朧のアミノ酸を含み且つ酸に
対して安定なタンパクである。
本発明の目的たるヒト免役インターフェロン(IFN−
r、ヒト ガンマ インターフェロンともいつ)ハ、α
−インターフェロン及ヒ!−インターフェロンと対照的
に、pH2で不安定であり、主としてリンパ球のマイト
ゲン誘発によって産生し7・ しかも明らかに異なった
抗原性を示す。最近まで、ヒト免疫インターフェロンは
極めて低いレベルでしか検出されなかつ之ため、特性決
定が固液でめった。最近になって、ヒト免疫インターフ
ェロンのかなり進んだI製が報告されfic(aが、こ
の精製もまだ部分的なものであるっこの報告によれば、
フイトヘムアグルチ二ン(phytohaemaggl
utln)とホルボールエステル(phorbol e
st@r)との組合せを用いてリンパ球培地(カルチャ
ー)を刺#し、て化合物t−産生し、一連のクロiトゲ
ラフ分陰によって化合物を精製した。この方法で分子値
58,000の産生物が得られた。
mRNAを卵母細胞中で翻訳するとヒト免疫インターフ
ェロンに特有のインターフェロン活性を示す極めて少量
のヒト免疫インターフェロンが互生じた。これにより、
免疫インターフェロンeDNAの合成及びクローニング
が可能であると予想された(7)。
これまでは、十分な量の免疫インターフェロンが得られ
ないため、精製した成分の特性決定及び生物学的特性を
明らかにするための実Mt”行なうことができなかった
。しかし乍ら、粗Ig!剤を用い゛たith vitr
oテスト及びネズミr−インターフェロン製剤を用いた
インビボ(1m−マO)テストIICより、免疫インタ
ーフェロンの主たる作用は免役−節剤たる作用であろう
と推定されていた(8.9)。
免疫インターフェロンは、全てのヒトインターフ二一ン
に共通の抗ウイルス的性及び抗細胞活性を有しており、
加えて、α−インターフェロン及び!−インターフェロ
ンの活性に相乗効果を与えるα−0更に、腫瘍細胞に対
するr−インターフェロンのLl四υ抗増殖効果は、他
グループのインターフェロンの約10乃至100倍であ
ると報告され7’h(8,11,12)。この結果と顕
著な免役調節作用(8,il)とを合せて考慮すると、
IFN−rはIFN−α及びIFN−/よシも癌かに顕
著な抗腫瘍作用を有すると推定される。事爽、マウス及
びネズ<IFN−rH剤を用いたin−テストでは、骨
肉腫に対する抗腫瘍作用が、抗ウイルス的に誘発された
インターフェロンよりも明らかにすぐれていることが証
明されft u@ 。
IFN−rが極めて入手し難いため本発明以前の前記の
如きテストではいずれも、かな9粗な製剤を使用せざる
を得なかった。にもかかわらず、これらのテストから免
疫インターフェロンの極めて重要な生物学的作用を確信
することができた。免疫インターフエーンは、抗ウィル
ス活性を保有するのみでなく、多分強力な免疫調節及び
抗腫瘍活性を有しており、極めて有望な治療薬にな9得
る筈である。
組換DNA技術を応用した方法によって必要な多量のヒ
ト免疫インメーフエ四ンを極めて有効に産生じ得ること
が判明した。産生される物質は、天然のヒト由来物質の
特徴であると思われるグリコシレージ目ン(glyew
ylatlon)を含むか否かく関わり無く、ウィルス
、新生(腫瘍)及び免疫抑制の見られる種々の症状又は
病気の治療の丸めに臨床使用することが可能な生物活性
を示すであろう。
組換DNA技術は、かな夛複雑な応用の段階に到達しえ
1分子生物学者は、種々のDNA配列をかなり容JIK
組換えて、形質転換微生物中で大量の外因性(・xog
@noms )メン/<り産物を産生じ得る新しいDN
A完全体を作成し得る。種々の平滑末端又は1付着”末
端を有するDNム断片klnxllxs。
結合し特定微生物の形質転換に使用1得る有効な発現ベ
ヒクルを製造しこれらのベヒクルに所望の外因性−物を
有効に合成させるための一般的な手段及び方法はすでに
開発されている。しかし乍ら、個々の産物に関しては、
技術がまだ開発途上であり、常に成功を予調し得る11
どには技゛術は進歩していない。実際、実験による裏付
けをもえずに結果の成功を予言した学者もhるが、彼等
の方法は、実行不能である危険を含む。
プラスミド、すなわちしばしば細胞1個当や!ルチコビ
ーとして細菌又は他の微生物中に見出される二重鎖DN
Aの非染色体ループは依然として組換DNA技術の基本
的9!索である。プツスゼドDNムがコードする情報に
は、娘細胞内にグラスイドを再生するのに必要な情報(
すなわち、複製の開始点(オリジン))が含まれ、さら
に通常は、−所望のグラスイドを含有する宿主細胞のク
ローンt″識別し且つ選択培地で優先的に増殖させうる
ような1つもしくはそれ以上の選択特性、たとえば抗生
物質に対する耐性が含まれる。グラスイドの有用性は、
それヤれプラス電ドDNム上の異なる部位を識別する成
る種の制限エンドヌクレアーゼすなわち「制限酵素」に
より特異的に開裂させうる点にある。その後、開裂部位
またはこの開裂部位に@接して再構成した末端における
末端−末端結合によp1異種遺伝子もしくは遺伝子断片
をプラス々ド中に挿入することができる。仁のようにし
て、いわゆゐ複製可能な発現ベヒクルが形成される。D
NA0組換えは細胞の外部で行なわれ、得られ九「組換
体」複製可能発現ベヒクル、すなわちグラスイドを形質
転換上して知られる過程によp細施中に導入し、この形
質転換体を増殖させることによシ組換ベヒクルを多量に
得ることができる。さらに、コードされているDNAメ
ツセージの転写及び翻訳を支配するプラスきドの部分に
対して遺伝子が適正に挿入、されれば、得られる発現ベ
ヒクルを使用して挿入遺伝子がコードするポリベグテド
配列を実際に産生させることができ、この遇輻を発現と
名付ける。
発現は、グロモーメーとして知られる領域で開始される
。RNムポリメラーゼがこのブロモ−ターを識別し結合
する。発現の転写期において、DNAははどけて(um
imlmg ) 、メッセンジャーRNAをDNA配列
から合成する鋳型としてm出させる0次いで、メッセン
ジャーRNAは、メッセンジャーRNAがコードしてい
たアンノ酸配列を有するポリペプチドに翻訳される。各
アミノ酸は翼クレオチドトリプレットすなわち「コドン
」によりコードされ、このコドンが集合して「構造遺伝
子」すなわち発現されるポリペプチド産生物のアミノ酸
配列をコードする部分を構成する。翻訳は「開始」信号
(通常人TGであって、これは得られるメッセンジャー
RNAにおいてはAUGになる)において開始する。い
わゆる停止コドンは翻訳の終了を規定し、従ってそれ以
後アンノ酸ユニットは産生されない。産生じた産生物は
、重賛に応じ微生物系で宿主細胞を溶菌しかつ他の細曹
偏白質を適尚に精製除去して産生物を回収することによ
〕得られる〇 実際、組換DNム技術の使用によシ、いわゆる直鎖的発
現法によ)全く異種のポリペプチドの発現が可能になシ
、或いは同種ポリペプチドの7ξミノ配列の一部と融合
し九異種ポリペプチドを発現させることもできる。後者
の場合、目的とする生物活性産物は、時に、融合した同
al/異種ポリヘクチド中で、細胞外環境において開裂
されるまで、生物的に不活性の形で存在する。英国特許
出願公開g意・671876ム号及び%VMs@L A
mrleaw+8ei*m@1st、 ss、 @@4
(i@80)参照。
遺伝学及び細胞生理学を研究するための細胞培養又は組
織培養技術は十分に確立している。単一した正常細胞か
ら連続トランスファ処理にょp永久細胞系(%r−賛n
t c@ll lln・)t−得てこれを一部する手段
及び方法もすでに知られている。研究に使用する゛ため
には、これらの細胞系を液体培地中の固体担体上に維持
するか、又は栄養支持体を含む懸濁液中で増殖させる。
機械的な問題さえ解決できれば量産は容易である。技術
の現状を更に十分に理解するために、Mierobio
logye li 2版、 &rp@ram Rove
 Pd1iah@rs* Ina* Hag*rs*o
vne Maryland(1973)、特に1122
頁以障、及び、8c1*ntlfiajka*riea
n、 jLiJ* al1頁以障(1981)を参考文
献として引用する。
本発#4蝶、組換DNム技術を用いて、ヒト免疫インタ
ーフェロンを、好ましくは直接的な形態で、且つ市場で
認可されるための動物実験及び臨床試験を開始し且つ実
施するに充分な量で、上手く産生じ得るという知見に基
いている。産生物は、その金てO形態において、人間の
ウィルス感染、騰性膣瘍及び免疫抑制又は免疫欠如状朧
に対する予防又は治療装置での使用に適している。その
形態は、様々な可能性のあるオリゴマーの形l1t−含
んでおり、又、グリコシレージ曹ン(assoclat
@dglyaosylatiom)を含むこともある。
産生物は遺伝学的に操作された微生物又は細胞培養系(
セルカルチャー’/J?ム)Kよシ産生される◎従って
、従来よりもより有効にヒト免疫インターフェロンを産
生し、単離し得る可能性がある。その最適具体例におい
て、本発明の一つの重畳なファクターは、単離し得る量
且り成熟形11 (mtmr@form )でヒト免疫
インターフェロンが産生されて宿主i&!から分ips
れるように微生物又はセルカルチャーを遺伝学的に製造
することにある。
本発明は、このように産生されるヒト免疫インターフェ
ロン並びにその産生手段及び方法を含り本発明は更に、
発現可能な形態でヒト免疫イン!−フエ冑ンをコードす
る遺伝子配列を含む複製可能なりNム発現ベヒクルに係
る。更に本発明は、前記発現ベヒクルで形質転換した微
生物菌株又はセルカルチャーに係)、又、ヒト免疫イン
ターフェロンを童生じ得る前記の如く形質転換された菌
株又はカルチャーの微生物カルチャー又はセルカルチャ
ーに係る。更に本発明は、前記免疫インタ−7zロン遺
伝子配列、DNム発現ベヒクル、微生物菌株及びセルカ
ルチャーt−*製するのに有用な種々の方法並びに特定
の具体例に係る。更に本発明は、前記微生物及びセルカ
ルチャーの発酵カルチャー(培地)のmHに係る。更に
本発明は、。
直接発現産物として成熟形で宿主細胞から分泌されるヒ
ト免疫インターフェロンの製造に係る。この方法は、成
熟ヒト免疫インターフェロンの配列をコードする遺伝子
に加えて、シグナルポリペプチドをコードする5′−フ
ランキングDNA配列を使用する。シグナルポリペプチ
ドは、宿主生物の細胞壁へ分子を運搬する際に補助的役
割を果し、この細胞壁において成熟ヒトインターフエラ
ン産生物の分泌遥1中に開裂されると信じられている。
この具体例によル、細胞内宿主lンパク質又は細胞砕片
の汚染物を除去するように設計された関連方法を用いな
くても、意図する成熟免疫インターフェロンを単離且つ
精製し得るようになる。
本明細書中、「成熟ヒト免役インターフェロン」とは、
シグナルペプチド又はプレシーケンスペプチドを伴わな
いヒト免疫インターフェロンのll生物又はセルカルチ
ャー産生物を示し、このシグナルペプチド又はプレシー
ケンスペプチドはヒト免疫インターフェロンmRNムの
翻訳の際に常に存在するものである。従って本発明は、
第一アミノ酸゛としてのメチオニンを有している(構造
遺伝子の前にムTG開始シグナルコドンを挿入すること
により存在する)か、或いはメチオニンが細胞内で又は
細龜外で開裂されている場合は第一アミノ酸として正常
なシスナインを有する成熟ヒト免疫インターフェロンを
提供する。成熟ヒト免疫インターフェロンは通常のシグ
ナルポリペプチド以外のものとの複合タンパク質として
産生され得、この複合体は細胸外壌境で特定的に!$1
11!され得る(英国特許出願公開第2007676ム
号参照)。最後に、成熟ヒト免疫インターフェロンは外
因性の余分のポリペプチドを開裂除去する必要もなく直
接発現によシ産生され得る。発現ベヒクルがシグナルペ
プチドと成熟ヒトインターフェロンとを一緒に発現し且
つ所与の宿主がシグナルペプチドを除去できない或いは
有効的に除去できない場合にはこのことは特に重要であ
−る。このように産生された成熟ヒト免疫インターフェ
ロンは、ウィルス病、悪性腫瘍及び免疫抑制又は免疫欠
如状態の治療に使用し得る適合レベルにまで回収、精製
される。
ヒト免疫インターフェロンは次のようにして得られ喪。
1、k)組織、例えばヒト騨組織又は末梢皇箪リンパ球
を免疫インターフェロンの産生を刺激すJllえめマイ
トゲンと共に培養しえ。
i 前記セルカルチャーからのセルペレツ)にりいて、
全細胞質BNムを単離するためリポヌタレアーゼ阻害剤
の存在下で抽出し九〇 龜 オリゴ4T−カラムによ)ポリアゾ翼ル駿膠態O全
メツセンジャーRNム(mRNム)を単一し九〇こt)
wa翼NムをV曹糖l!F度勾配と酸−尿素ゲル電気泳
動法とを用いてナイメ分画し九〇 也 適轟1に諷11Nム(18乃至18g)を対応する
一重鎖相補DNム(・DNム)K転換し、これから二本
鎖0@DNムを産生し九〇ポリーーCテーリング(p@
1y(Ctall魚萼)の後、前記DNムを−り又は1
数011111?−カーを有するプツス々ドのようなベ
タターO中に挿入し九〇 4 このように調製されたベクターを使用してs a 
x−ライプツリを提供すみ細菌細胞を形質転換しえ。前
記のように誘導された誘発及び非諦発mRNムから調製
され九岡位体標識・DNムを複数に移された:I−二−
ツィプラリQmpli軸t・・・l・qllbrari
・−)を個別に試験するために用いえ。次に余分O・D
Nムを除去し、誘発@DNムり冒−ンを同定する丸め:
!ロニーをX@フィルムに露出させ九〇t l1発@D
Nムり一一ンから対応するプラス建ドDNムを単離し、
配列しえ。
i 次に配列され−kDNムを適嶋な発現ベヒクルの中
に挿入する九めK in vltre麩1し、この発現
ベヒクルを適轟な宿主細胞を形質転換する大めに用い、
この宿主細胞を今jI社培地の中で増殖させ、所曹のヒ
ト免疫インター7エーン童生物を発現させえ。
龜 このようKして産生し九ヒト免疫イyター7エpン
は確かにシスティンで始まるその成熟形態で14g個の
ア擢ノ酸を有してお〕、その特性は非常に塩基性である
。その単量体分子量はiff、14・と計算され丸。恐
らく多くの塩基性残基、疎水性、塩ブリッジ形成等が存
在するため、分子はオリゴマーの形で例えば二量体、二
量体又は四量体の形でそれ自身会合すゐ・自然物質で以
前KI[I[された高分子量(6)は、ア々ノ歇配列の
みに基いて計算され得なかつえものであ〕、翻訳後0/
リコVレージ冒ンによる炭水化物の寄与と同様そのよう
なオリゴ!−の存在に基づ(ものかもしれない。
9、幾つかの宿主細胞システムでは、籍に!O値のアミ
)酸のシグナルペプチドと共に発現されるようK11l
lべ把タルに結合し九とき、ヒト免疫インター7エーシ
011E勤彫態は竜ルカルチャー培地0”l”K這ばれ
、間取及び精製方法において@)知れないほど助けとな
る〇 ζζに記載する本発明O好適具体例は、とシわ杜、英1
14I許出願公開第fO暴!1311!A号に記載の微
生物E、−・11に一12株294 (@mdA、 t
hi″″。
k*r−* kh1m+)  を用いて実施した。この
菌株はアメリカン タイプ カルチャー コレクシ冒ン
に、ムTCC寄託番号@31446号で寄託されている
◎しかし、他の種々の微生物菌株、例えば、1sell
 l、1. !1uX17711(ATCC第3153
7号×1、gllW311G(P″″、λ−、*m栄養
株pr*tr*pki* )(ムTCC第273121
号)Oような公知のLセ旦菌株或いは他の微生物菌株も
有用であ夛、これらの微生物菌株の多く紘寄託されてお
ル、アメリカンタイプカルチャー;レクシ曹ン(ムTC
C)(Dようtii可された微生物寄託施設から入手し
うる(可能性がある)0ムTCCカタ謬グリスト参照。
又、ドイツ公開公報第211444m2号参照◇これら
の他の微生物には、例えばBastllws 5mM1
11sのようlk 11a@1lll 並びに8m1m
m1la 旋岐加シル=及び8・社atta avar
・・赫as のような他の腸内菌等があp%これら紘異
種遺伝子配列を複製し、発現し得るプラスミドを用いて
使用される。
例えば、ベーメツクタ!−ゼ及びツクトースプ鑓篭−タ
ーシステムが、^穏ポリペプチドの微生物的産生を開始
させ旦り維持する丸めに有利に用いられえ。これらOプ
ロモーターシステムの構成と構造に関する詳細はC−■
d al 、 、 Natur@’!1 ’I B 。
藝1!(108)及びItakwa d al、 、 
8@1@me* uJeioi・(1117?)を参照
されたい0最近、トリプトファンに基くシステム、いわ
ゆる轡プg毫−ターシステムが一発されえ〇このシステ
ムの構成と構造Ellする詳細はGo@d4sl at
 al、 、 Nll@1@量・材用Re5ear@h
、 I、 4G!!7(1980)及び1910都3月
!4日付で出願されたKl@14畦1.、米is*許出
願υ、I1.g、N、1111Ljt−6号を参照され
たいO弛の多くの微生物プロ毫−ターが発見され利用さ
れておル、轟業者がプラスミドベクター中に機能的にそ
れらを結合し得るようにそのヌクレオチド配列に関する
詳細が発表された。例えば8t@bmIlstat m
l、、Ca1l、 2G、 2@11(1880)参照
〇  −1酵母菌株/酵母曹グロモーター とこぞ用いる発現システム拡N:co…と酵母菌、シ憇
匝ツ史山ear・マ1sia・との両方において選択と
複製が可能なプラスミドYRp7(14,15,16)
でもよい@酵母菌での選択の九め、プラスミドはυ炭1
遺伝子(14,1B、 1@)を含有し、この遺伝子は
酵母菌の染色体■に見い出される仁の遺伝子上の突然変
異(財)を含む酵母菌を補足する(す表わちトリプトフ
ァンの不在下での増殖を許容する)。
ここで社アメリカンタイプカルチャーコレクシ冒ンに制
限なしに寄託されていゐ菌株RH! 111(A’FC
C寄託番号第44076号)(至)を用い九。
しかし、菌体を■1にする突然変異を含むどの勤二匝μ
史’as e@r・マ1m1a・菌株も発現システムを
含むプラスミドの発現のための有効な環境となシ得ると
いうことが理解されよう。他の菌株P@114−1(至
)も用い得る。このトリプトファン栄養要求菌株も又T
RP 1遺伝子上に点突然変異を有している0(アルコ
ール脱水素酵素l用の)酵母菌遺伝子由来6′−7ツy
キングDNム配列(プロモーター)を非酵母菌遺伝子0
6’−側に配置し、外来遺伝子をプラスさド中に配置し
、ヒれを用いて酵母菌を形質転換すると、酵母菌中で異
種遺伝子の発現を促進(プロ毫−ト)シ得るOプロモー
ターの他に更に、酵母菌でO非酵母菌遺伝子の適正な発
現には、第二の酵母菌配列を必要とし、この第二の配列
は酵母菌での適正な転写終了とポリアデニル化とを許容
する丸めプラスよド上に非酵母菌遺伝子o sl−末#
に配置される0このプロモーターも他のものと同様に本
発明で好適に用いられ得る(以下参照)0好★しい具体
例では、酵母菌3−ホスホダシセリン酸キナーゼ遺伝子
(2)の8’−79ンキンダ配列を構造遺伝子の上流に
配置し、この構造遺伝子に続いて更に終了−ポリアブ二
ル化シグナル含有DNA、例えばTRP1遺伝子(14
゜15.16)又はPGK遺伝子−を配置して使用する
酵母−6′−フランキング配列は(3′−酵母菌終了D
NAと共に使用すると、後述)酵母菌での外来遺伝子の
発現を促進し得るため、高度に発現されたいかなる酵母
菌遺伝子の5′−7ランキング配列も重要な遺伝子産物
の発現に用い得る。成る環境の下で酵母菌は糖分解酵素
としての可溶性蛋白質を65%まで発現しく自)、旦つ
この高レベルは個個のmRNAの高レベル産生の結果と
思われる(2)から、いかなる他の糖分解遺伝子の5′
−7ランキング配列もそのような発現目的に使用し得る
筈である。例えば、エノラーゼ、グリセルアルデヒド−
3−燐酸デヒドロゲナーゼ、ヘキソキナ−ゼ、ピルビン
酸脱炭酸酵累、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−
6−燐酸インメラーセ、3−ホスホグリセリン酸ムター
ゼ、ピルビン酸キナーゼ、三員糖燐酸イソメツーゼ、ホ
スホグルコースイソメ2−ゼ及びグルコキナーゼ等。こ
れらの遺伝子の3′−7ランキング配列のいずれも上述
のような発現システムで適正な終了及びmRNムボリ7
デニル化に用いられ得る。他の幾つかの高度に発現され
た遺伝子は酸性ホスファター”II’に)遺伝子であり
、1’−7ランキング領域での突然変異(発現を高める
突然変異体)、通常TY1転移可能畏素(tra*+n
−posabl* sl@anmt ) @の存在によ
p高レベルの産生を発現する遺伝子である0 前記遺伝子は全て酵母菌RNAポリメラーゼl−によ〕
転写されると考えられる。リボゾームRN1.88 R
NA及びlRNA04.2s)K対する遺伝子を転写す
るRNAボリメ2−ゼ!及び鳳に対するプロモーターも
又そのような発現構成で有用であ)得る。
最後に、多くの酵母菌プロモーターは又転写制御作用を
有しておp1従って増殖条件の変化によ如オフにしたp
オンにしたりし得る。そのような酵母菌プロモーター唸
例えd次の蛋白質を産生ずる遺伝子である。即ち、アル
コールデヒドロゲナーゼ厘、イソチトクロム−電、酸性
ホスファターゼ、窺素代−と関連した分解ll素、グリ
セルアルデヒド−3−燐酸デヒドロゲナーゼ、麦芽糖と
ガラクトース利用に関係する酵素−勢である。そのよう
な制御領域はタンパク童生物の発現を制御するのに、特
にそれらの産生が酵母菌に対し有毒であるとき、非常に
有用であろう0又高度に発現され九遺伝子由来のプレモ
ーター含有5’−7−)ンキング配列を一つの5′−7
ランキング配列の制御領域と組み合わせることも可能で
あろう。この結果ハイブリッドプロモーターが生じ、制
御領域とプロモーター紘物理的に別個のDNム配列であ
ると思われるためこの組み合わせは可能であろう。
龜 セルカルチャーシステム セルカルチヤニさU二 培養(組織培養)でのを椎動物細胞の増殖は最近では通
常の方法となつ九(T1ssu@Cu1ture 。
ムmadams Pr@ms、 Krus@imd P
atryrson @ds、 、 1973参照)0こ
こでは免疫インターフェロン産生用宿主としてcoii
−y系すル腎線維芽細胞を用いた(2Sm)。しかし、
ここに詳細に説明する実験は、適合性のベクターを複製
及び発現し得るいか表る細胞系でも遂行され得る。例え
ば、WI38゜11HK、 8T3. CIO,VIR
O,及びH*La細胞系勢。
更に発現ベクターに必要とされるものは、複製のオリゴ
4始(転)並びに発現されるべき遺伝子の前に配置され
九プロモーターであシ、これらは必l!なすlシーム結
合部位、RNムスプライス部位、ポリアデニル化部位、
及び転写終了配列と共に配置される0本発明ではgV4
 Gのこれらの本質的な要素を使用し、好ましい具体例
として本発明を説明するが、本発明はこれらの配列に限
定されるべきでないことが理解されよう。例えば、宿主
DNAに組み込まれていない状態で機能し得るDNA複
製の細胞性オリジンと同様、他のウィルス(例えば、P
olymi、 Ad@n*、 VllV、 BPV 勢
)性ベクターの複製オリジンも用い得る。
直接発現 成熟インターフエpンポリベプチド(マイナスシグナル
配列)としてE、 5ellでIFN−r を直接発現
させるために用い九方法紘、それが合成N−末端と・D
NAの結合を含んでい、るので、ヒト成長ホルモン(2
)とヒト白血球インターフェロン(1)に対し以前用い
た方法の変形である。
後述される1611のヌクレオチド配列から、並びに幾
つかのIFN−α(2)のシグナルペプチドと成熟ポリ
ペプチドとの間の公知の開表部位との比較により推論さ
れるように、IFN−rは、10個のアミノ酸から成る
疎水性シグナルペプチド及びそれに続く成熟IFN−r
 (0146個のアミノ酸を有していゐ(第5図)。第
7111に示されているように、111NI  制限エ
ンドヌクレアーゼ部位は、好都合なことに、成熟IFN
−rの第四アミノ酸に位置している。ATG翻訳開始コ
ドン、第一、二、三ア電ノ酸(システィン−チロシン−
システィン)の;トンを導入し且つ旦蚊RI付着末端を
創出する丸めに、2つの合成デオキシオリゴヌクレオチ
ドが設計された0これらのデオキシオリゴヌクレオチド
をν・I O110()塩基対旦at NI−ヱdI 
 断片に結合し、IFN−rをコードし旦り互叩R1及
びPsi x lllilS位を末tlAIfc有fb
 111 S mj1対0対酸合成然ハイブリッド遺伝
子を構成したOこの遺伝子をIII RI  とPst
 1部位間でプラスミドyL@IF A☆103に挿入
し、発現プラスミドpxFN−r try 4 m を
構成し九〇このプラスミドではIFNゴ遺伝子はE、 
憇11 trpグーモーターの制御下で発llLされる
o (pL@IF A カ10 BはpL・IFムXS
O誘導体であJ)、L@!Fム遺伝子から遠位の1uR
I 部位が除去されている。こ04 RI部位を除去す
るために用いられた方法については既に分表′されてい
る嬶。) tm工皇二! 免疫インター7エ四ンを;−ドするaDNムのような異
種遺伝子を酵母菌で発現するため、4つの成分を含むプ
ラスミドベクターを構成すゐことが必要であった。最初
の成分はに、 cellと酵母菌の両方の形質転換を可
能にする部分であ夛、従って各画の選択し得る遺伝子を
含んでいなければなら危い。(ここでは、これはE4Q
…のアンピシリン耐性遺伝子及び酵母菌のTRP 1 
 遺伝子である・)この成分は又両方の生体中でグラス
々ドDNムとして維持されゐ丸めに両方の生体011製
オリジンを必要とする・(ここでは、これはpBR8$
12゜E−5ell  オリジン及び酵母菌の染色体層
のarm 1オリジンである。) プ2スンドO第二の成分は、下流に位置する構造遺伝子
の転写をプロモートするための、高度に発現された酵母
菌遺伝子の5′−フランキング配列である。ヒヒで用い
た5′−7ランキング配列は酵母菌3−ホスホグリセリ
ン酸キナーゼ(PGK)遺伝子の配列である。断片はP
GK 構造遺伝子配列のATGからこのATGから上流
の5bptでを切り出すようにして構成されたo5’7
?ンキング配列に構造遺伝子がうまく結合するように、
この5′−7ランキング配列はXba I及び旦so 
R1制限部位の両方を含む配列で置換されている。
システムの第三の成分は、ムTGs訳開始シグナルと翻
訳停止シグナルの両方を含むように構成された構造遺伝
子である0そのような遺伝子の単離と構成については以
下で説明するO 第四〇成分は酵母菌遺伝子の3′−7ランキング配列を
會む11母曹DN臘列であ襲、これ社転写終了とポリア
デニル化の適正なシグナルを含んでいる。
これらO成分が全て存在した場合に、免疫インターフェ
ロンが酵母菌でIIIj:、された。   −3、哺乳
動物セルカルチャーでの発現 哺乳動1lall!培養(セルカルチャー)での免疫イ
ンターフェロンの合成方法は、異種転写ヱニットの制御
下で外来遺伝子の自律的複製と発現の両方が可能なベク
ターの開発に依存していた。紡織培養でのこのベクター
の複製は、ベクターに(8V40ウイルス由来の)DN
A複製オリジンを提供する仁とと、ヘルパー機能として
T抗原を内因的に発現する細胞系(sts、、2o)へ
ベクターを導入することで達成され九〇SV40ウィル
スの後期プロモーターはインターフェロンの構造遺伝子
の上流に存在し、遺伝子の転写を確保していた0IFN
−rを発現させるために用いたベクターは、DNA複製
の&1旦オリジンとともにL!!tLLでの選択のため
に選択し得るマーカー(アンピシリン耐性)を提供する
pBR322配列で構成されていた。
これらの配列線、プラスミドput、−t@からII導
され、JLJBI 及び−、ILHI制限部位に及ぶ領
域を含んでいた・8V40オリジンはこの領域(8G、
al)を含む342塩基対Pvul −join1厘断
片から鋳導される(両方の末端紘4児8I末端に転換さ
れる)。これらの配列は、DNムIIl!製のウィルス
性オリジンを含むのに加えて、初期及び後期転写ユニッ
トの両方に対するプロモーターをコードしている・SV
40オリジン領域の方向性紘、後期転写ユニットに対す
るプロモーターがイン/−7エロンをコードする遺伝子
の近くに配置されるようにし九〇 第1図れ、誘発末梢血リンパ球(PIIL)ポリ(2)
十BNA0311111!Il勾Eli心分11110
結Jpt示している・インターフェロン活性を有する2
つOビークが12gと16Sのナイスで観察された(斜
線を付し−にヒストグラムによp示されている)Oリポ
ソー五RNムマーカー(別個に遠心分離した)O位置社
吸収プロフィールの上方に示した。
第2図は、誘発PBLポリ(4)+RNAの酸−尿素−
アガ四−ス電気泳動の結果を示している。
rssnmAと共に移動するたり九−っの活性ピークが
観察された。隣接するレーンで電気泳動にがけ旦つ臭化
エチジウム染色によp可視化したリボソームRNAff
−カーの位置は活性プロフィールの上方に示した。
第6図は、誘発及び非誘発のIfip−標識cDNAプ
ローブと96個のコロニーとのハイプリダイゼーシ目ン
パターンを示す。96個の個々の形質転換体をマイク四
タイタープレートで成育させ、レプリカ(r@pHgm
)を2秋のニド冒セルロース膜上KIIL、次にフィル
ターを誘発mRNA (第3図ム)か或いは非誘発PI
Lカルチャーから単離した一RNム<開発されていない
、第3図B)からal製し九”P−eDNムプ田−プと
ハイブリダイズしえ。
フィルターをハイブリダイズしていないRNムを除去す
ゐ九め洗浄し、次KXIIIフィルムに露出さぜえ0む
のフィルターのセットはそのような86備のセット($
sOO個の独立したブー=−>0典型例を表わしている
。「誘発」りR−7の例はHllとして示されている。
第4閣は、クーーン@ 9 eDNム挿入物の1!1l
ltilエンドヌタレア−(マツプである。・DNム挿
入物はL11部位(両端に点で示す)とオリゴac−4
Gテール(1本曽で示す)を末端に有している。制限ヌ
クレアーイー表によル生成する断片O数と大11さ紘・
−アクリルア建トグル電気泳動によシ評価し九〇部位の
位置は核酸配列(第5図に表示)によ)確iIされ九〇
最大のオープン解読7゛レームO:1−ド領域はamに
囲われてお)、斜線領域は推定し九30残基シグナルペ
プチド配列を表わし、他方点O領域は成熟IFN配列(
146ア書)酸)を表わしている・mRNAの墨′末端
は左側にあ〉、3′末端は右側にある・ 第6図は、プラスイドp 69 @DNDNA物のヌク
レオチド配列を示している。しかしながら、この配列d
IFN−γ中の最も普遍的な相同形(all@ll・f
@ns ) を示している。最大のオープン解読7レー
ムの推定アオノ酸配列も示されている0推定シグナル配
列は81から820で示す残基によ9表わされている。
第6WAは、IFN−rmmNム構造と白血球インター
7エpン(IFN−α)及び*維芽細胞インターフエ■
ン(IFN−β)の構造との比較図でるゐ0クロー 7
69 mRNA(I FN−r ) 拡かなシ多量の翻
訳されない配列を含んでいる〇 第7図は、IFN−r発現プツスiドpIFN−rt!
1141の構成を示す模式図であゐ0出発物質はプラス
イドt・9から0121sO塩基対Psi 1−DNム
挿入物である。
第8Eは、サル細胞でのIFN−rの発IAK用いられ
るプラスイドの構造を示す図である0第9図は、s穏O
星co RI  消化ヒトゲノムDNAをp69の@D
NDNA物からの″ff1P−榔識600塩基対12d
nl断片とハイブリダイズする5outh・rmハイプ
リダイゼーシ曹ンの結果を示す08つのI!jJRI 
断片は明らかに各々のDNAサンプル中でプローブとハ
イブリダイズする。
第10図は、6種0111J @エンドヌクレアーゼで
消化し九ヒトゲノムDNムをP69由来Imp−標識プ
ー−プとハイブリダイズする8owtk@rmノ為イブ
リダイゼーシ■ンの結果を示すO 第11図は、PGKプロ彎−ターが単離されたベクター
p l 1 (D 1.1 kbp 111雇冨挿入物
の制限マツプを示す。PGK遺伝子の5′−7ランキン
グDNムへの1JRI 部位及びm1部位の挿入が示さ
れている。
第1!図は、xk!11部位及びシLIRI  部位の
挿入前のPGK遺伝子に対する初期コード配列を加#1
13図は、PGKプロモーター上の位置−8にx−1部
位を挿入するために、及びこのXml末端及び鋤3ム末
端を會むL旦Iの5′−7ランキング配列の39by断
片を単離するために用いられた接衝を図式的に示す。
第14図は、上記s*bp断片、P!!Iから勤13ム
までの付加LLK!!’−フランキング配列(zssb
p) (第11図参照)とx−Iに隣接すゐIJ33 
RI  部位とを含む300bp断片の構成を図式第1
it図は、第14図で構成された断片に加えて、LLK
 S’−79ンキング配列の坦■麗からPvw Iまで
のl5OObν断片(第11図参照)を含む1ioob
シPGKブ一モーター断片(」雇璽/ Ihs RI 
)の構成を図式的に示す〇第16図は、改良PGKプ騨
毫−ター、Iff−r*DNム及び酵母菌PGK遺伝子
の終了領域とを為発現ペタターの組成を示す。これにつ
いては以下に詳細に説明する・ A、  IFN−r mRNムの起 末梢血リンパ球(PBL)を白血球泳動法によ)人間の
提供者から採堆し九。PIILを更にフィコルーハイパ
ツク(Fi*oll−Hypaqu・)勾配遠心法によ
〉精製し、次KIPM11640,1SL−グルタミン
、露1 wM IilPmB及び1チベエシリンースト
レプトiイシ/III液(Glb@a、 Grand 
l5land、  NY )中!1X10・細胞/−の
濃度で培養した。これらの細胞を!イトダンぶどう球菌
エンテートキシン1(ls/sg)Kよ)誘発してIF
N−rを産生させ、1−co、中37′c″e14時間
から41時間培養した。IFN−1活性の相対収率な増
加させるためデスア竜チルチ罎シン−α−1(0,1μ
ぎ/−)をPAIL培養物に加え*0 農、メツ4/ジ −RNムの PIILtI11養吻からの全KNムを本質的にlil
@rg@L8a L−st al、gによシ報告されて
いるようにして抽出した0細胞を遠心によってベレット
にし、次に10 mM Na0410 mM  )リス
−MCI(pH7,5)、1、5 mM MgCL*及
び10mM リボヌクレオシドバナジル複合体中に再懸
濁した。細胞をNP−40(最終濃度1チ)の添加によ
シ溶解し、核を遠心によシペレ゛ットにした。上Uみは
全RNAを含んでおシ、これを多数回のフェノール及び
クロロホルム抽出によシ更に和製した。水相をNaC1
O,2Mにし、次に全RNAを2倍量のエタノールの添
加によシ沈殿させた0非霞発(jltlJ激しない)培
養峻からRNAを同じ方法により単離した。オリゴ−I
Tセルロースクロマトグラフイーヲ全RN人標本軸から
raRN Aを精製するために用いた0培養したPBL
I−fitからの典型的な収量は、全RNAは5乃至1
019であp1ポリ(4)+RNAは50乃至20.0
μgであった。− C,mR)iAOナイズ分画 m1LNム標本を分画するため2つの方法を用いえ〇こ
れらO方法は(−緒によシもむしろ)別々に用いられ、
その結果各々でかなル014DIFN−r飄BNムが得
られた。
魔性剤7オ羨ムア建ドの存在下でのシ冒糖勾配達心法を
mRNムを分画するために用いた。10%の7オルムア
ミド中のS−乃至25−のショ糖勾配−をgo℃で19
時間154.000Xgで遠心し九・次に連続7ラクシ
薗ン(0,8m)を勾配の頂部から除去し、エタノール
沈殿し、その一定量をmRNムの■訳の丸めX@nop
ws la・11g卵母細胞の中に注入した■oiml
Lに24時時間−え後、Jit*vart #によ〕説
明されたWIIH(ヒト羊III)細胞上でV@5ls
ular gtemtlt1mクイルス(インディアナ
株)又はIm軸pha1wye*arditla ?イ
ルAを用いるlIs的細胞変性効果抑制試験でインキエ
ペーシmy培地の抗ウィルス活性を分析し九〇九だし、
ζこで妹、ウィルス感染に先立ち(4時間のかわシに)
24時間サンプルを細胞とインキュベートし九02つの
活性ピークが常にシヨ糖密度勾配分画RNAで観察され
た(第1図)0片方のピークは12S゛の計算値(サイ
ズ)で沈降し、注入RNA1μgにつき(IFN−α基
準で)Zoo−400ユニット/−の抗ウィルス活性を
有していた。活性の他方のビーク祉サイズ16gで沈降
し、遅い沈殿ピークの、活性の約半分を有していた。ヒ
トIFN−γが効果を有しないウシ細胞系(MDBK)
で同じ7?クシ曹ンを分析しても活性が観察されなかつ
九ことから、これらの各々の活性ピークはIFN−rに
よるものと思われるoIF)J−α活性とIFN−/活
性の両方ともMI B K分析で容+lに検出される筈
である(5)。
論翼Nム(200μg)の分画な、酸−尿素−アガp−
スゲル電気泳動法でもおこなった0スラプアガーースゲ
ル(17,81)を、1.7S−アガp−ヌ、0.01
!iMりzy酸ナテトウA(pt138)及び6M尿素
で構成し九〇電気泳動を119アンペア、4℃で1時間
おこなった0次にゲルをかみそ〉O刃で細分し九。個々
の薄片を70℃で嬢解し、フェノールで二度、りaa7
オルムで一度抽出した壷状に7ツクシ目ンをエタノール
沈殿させ、その後シシ!→卵母細胞に注入し抗ウイルス
分析によ)IFN−rmRNムを分析した。九つ九一つ
O活性ビータがゲル分画サンプルでI!察されたく第1
O0こOビークは1811  RNAと共に移動し、注
入RNA lμgにつき60G二ニツ)/sgO活性を
有してい九0この活性は、又MDIKfi胞を保護せず
、IFN−rK4IlIk的と思われる・ シ璽糖密度勾配(1!II及び五・8)と酸−尿素ゲル
(III)で観察され九活性ピーク間のナイス01異は
これらの別々O分画方法が全く同一〇変性条件下では遂
行されないことによシ説明され得る。
D、  IFN−γ配列を含む;口二一ライブラリのl
ll11 ゲル分画した3μgのmRNAを使用し、標準操作法(
26,39)で二重鎖@DNAを調製した。6−ポリア
クリルア建ドゲルでe D N Aをサイズ分画した0
2種のサイズ画分(7ラクシヨン)$00−1500 
k+p(1B1+ag)と)1100bp(104mg
)とを電気泳動溶出した。各サイズのlDNAのサンプ
ル85mgにターにナルデオキシヌクレオチジルトツy
スフエツーゼーを用いてデオキシ−C残基をつなぎ、同
様にP31部位−にデオキシ−C残基をテーリングした
800ngのプラス建rpBK32 g−とア;−ル(
anneal )  シた0アニール後の各混合物を用
いてE、 co旦に一12株394を形質転換した。8
00−1500bν・DNAから約5ooo株、 ) 
1500bpOoDNムから約400株のトランスホー
マント(形質転換体)が得られ九〇 g、  w発@DNム0ニア0ニーライブラリのスクリ
ーニング 各=ya=−を、LB←)+5声g/sC)テトラサイ
クリνを入れたマイクロタイタープレートのウェル(w
ll)  K別々に11種し、DMSOをystで加え
九後−SO℃で貯蔵した。コミニーりイプラリの2種の
コピーをニトロセルp−スフイルター上で誘発及び非誘
発PBL培地からゲル分画したmRNAのサイズ188
画分を用いて”p−*識・DNムプ四−プを調製した。
プライマーとしてオリゴ(ITI!−11を使用し既報
(1)の反応条件を用いた。
600−1500bpサイズC1lDNA ii分から
得喪soo。
株のトランスホーマントと)1500に+pサイズのl
DNA i1分から得九400株のトランスホーマント
とを含む1組のフィルターを、20X10@@pnaの
誘発”P−vDNムとハイブリダイズさせたOも51組
0フイルターを20 X 10’*ymの非篩発S″P
−@DNAとハイブリダイズさせた。Fr1fs*に勢
輔が示した条件でハイブリダイゼーションを16時間継
続した。フィルターをよく洗浄しIn、DuPont 
Ligktnlng−Plus増感板を密着させたKo
dakXR−5Xldフィルムに16〜48時間露出し
た02種のプローブに関して各コロニーのノーイブリダ
イゼーションノ(ターンを比較した0約4(lのコロニ
ーは明らかに双方のプローブと〕為イプリダイズし、約
5096のコロニーはいずれのプローブともノーイブリ
ダイズしなかった(第3図)。124個のコロニーは誘
発プローブとかなジノ・イブリダイズしたが、非誘発プ
ローブについては検出不能な程弱いものであった。これ
らの各コロニーをマイクロタイタープレートのウェルに
個別に接種し、増殖させてニトロセルロースフィルター
に移し、前記と同様に2柚のプローブとハイブリダイズ
させ九〇同様に各コロニーから急速法(r桑pid m
・thod)−によって単離しえプラス虐ドDNムをニ
トロセルレースフィルターに付着さぜ、誘発及び非−発
プ四−プとハイブリダイズさせ良@0意!個のブー品−
から得たDNムは誘発プー−プOみとハイブリダイズし
た・これらな”st発−1u&−と名付は九・79発:
1wx−O4I性決定 膠り018111冨gmニーーからプラスζドDNムを
調製し、これを用いて挿入@DNA0q性決定を行なつ
え0暴りOII11発プラス(P・Lp@I。
16m、171及び?7り0制隈エンドヌクレアーゼ!
ツビンダによれに4つのプラス建ドが同様の開隔ヌクレ
アーゼマッグを有すると推定された・これb04種のプ
ラス建ド(t・’I、 p@e、 pll、 11雪)
は夫々、挿入・DNN空中4個のジ組1部位と8個O]
!1lf1部位と1個の、Ra11部位とを有していえ
第暴Oグツス電ド(pill)は共通の!!!!I断片
を有してお〉、他0411に比較して短い・DNムクー
−yであると思われ九〇制限ヌタレアーゼマツビンダに
よって推定された相同性(hom@l・U)はハイブリ
ダイゼーシ冒ンによって確認された0プラスi Vp6
’10600bp ODd* I IFi片からImp
−標識DNムプp−プを調製し−1これを使用して他O
誘発コ關ニーとのハイプリダイゼーシ目ン−を実施し九
〇制限ヌクレアーイでラッピングされた移りのコロニー
全部がこOブー−プとクロスハイブリダイズし九〇誘発
/非誘発スタリーエyグに選択した124個のうちの他
017個のコロニーも同様であった・クロスハイブリダ
イズするこれらのプラスミドの各個に於ける挿入@DN
ムの長さを、加I消化及びゲル電気泳動法によって測定
し九〇、シ 最長の挿入eDNム含有するりは一ン紘挿入長1200
−1400byの夕筒−ン@−と考えられる・以後の実
験全部にこのDNムを使用し九。
この制限エンドヌクレアーゼマップを第4図に示すO 1目の挿入@DNムは、3つの独立発現系で産生された
発i1!産物によって抗ウィルス活性を生ずるIFN 
r @DNムであることがIiE明された〇これに関し
て以下に詳述する。
0、 690挿入IDN人の配列解析 グラス建ドp6@0挿入・DNムの完全ヌクレオチド配
列を決定するために、断片をMISベクター鵬P1@で
サブクルー二ング後にジデオキシヌクレオチドチェーン
メー々ネーシロンメソッドーで処理しM&xMm−01
1mrt 法−で処理した〇最長Oオープン解読7レー
ムは、第5図に示す166個のアミノ酸から成るタンパ
クをコードしている〇;−ドされた第一残基は、・DN
ムの5′−末端の第−mIt署トンである0ア電ノ末端
の最初+026個の残基dllljl12)146個の
アミノ酸の分泌のためOVシグナル配列して機能すると
推定される0この推定シグナル配列は、別の特性付けさ
れたシグナル配列と共通の4I黴、例えFiナイズ及び
疎水性を有する。頁に、推定され九−表記列に見られる
4個Oア電ノ11(ser−1eu−gly eFm 
)は、数種の白血球インク−7二−ン(LeIF B、
C,D、F及びH,(2))の開裂点で見られる4個の
残基に等しい・14m個のア電−ノ駿から成る;−ドさ
れ九成熟ア建ノ酸配列は分子量17.140である。
コードされたタンパク配列中のアミノ酸2s−N O(
asn−gly−thr)及びアミノ酸10G−102
(asn”tyr−s@r )にグリ−シレージョンが
可能な2個の位置−が存在する。このような位置の存在
は、ヒトIFN−r(s、st)の周知のグリコシレー
ジ目ンに一致する◇更に、2個しか々いシスティン残基
(位置!及び3)社立体配置から見て余夛にも近接して
いるためジスにフィトブリッジを彫成し得ない0このこ
とは、β−メルカプトエタノール−)の如き還元剤の存
在中でのIFN−1の周知の安定性に一致する◇推定さ
れた成熟アミノ酸配列はほは完全に塩基性であシ、全部
で30個のリジン。
アルギニン、ヒスチジン残基を有しておシ、アスパラギ
ン酸及びグルタミン酸残蓬は全部で19しかない。
プラス建ドp69のDNA配列から推定されたIFN−
rのmRNA構造は、IFN−α(1,2)又は夏FN
−β(5)のmRN人とは明らかに異なる。#g6図に
示す如(、IFN−α又はIFN−βに比較してIFN
−roコブー領域はよシ短かく、5′及び3′の未翻訳
領域はよシ長い。
H,11匹」欠ぢυIす■ロ21ニヱ王旦乙の直接発現 第7図に示す如く、50μgのプラスミドp69を組!
で消化し、6−ポリアクリルアミドゲル上の電気泳動で
121SObpの挿入物を単離した0約10μgの挿入
物がゲルから電気泳動溶出した。
こOPnI断片Sμgを3 ” = ツ) O!Laj
 NI(B@th@sda R*swr*h Labs
 )で31℃で15分間部分消化し、+81ボリアクリ
ルア々トグルを用いて反応拠金物を精製したO所望の1
100塩基対Bst翼!−ヱst I断片約OujKg
 を回収した0ホスホトリエステル法−によって図示の
2個のデオキシオリゴヌクレオチド即ちs ’−dAA
TTcATGTGTrATrGTcと5’−dTGAC
AATAACACATG(第7図)とを合成し、下記の
如くリン酸化した030 sLの6OmM)リス−HC
1(p 8 )  と10 vdli MgC4と11
w+Mβ−メルカプトエタノールと240 ficic
r−”P)A’l’P (Am@rsham 、 50
00 CL /8o1m )中で各デオキシオリゴヌク
レオチド100 pm・l・を脅せた012具ニツトの
T4ポリヌクレオチドキナーゼを添加し、31℃で30
分間反応させた01μtの10mMALPを添加し更に
20分間反応させた・φ−OH/CM(ツ3抽出後、オ
リゴマーを0.26μぎの担NI−L111100塩基
対断片と合せてエタノール沈殿した。30μtのSIO
mM)リス−HctctM7.5)と10 mM Mg
C4と10mMジチオスレイトールと0.5mMATP
と10ユニツト0T4DNムリガーゼ中で前記の断片を
20℃で2時間給合し九〇(付着末端の結合による重合
を阻止すぺ<−)混合物を30エニツトC)Pailと
30エエツトのEco RI  とKよって1時間消化
し、6Lj!ボリアクリルアイドゲルを用いて電気泳動
にかけたO電気泳動溶出によ、9111B塩基対の産生
物(110,000cym )を回収した。
プツスミドPL@IFA抛 103(第7図)はL@I
Fム遺伝子から離れた―RI部位が除去されたープラス
ミ・ドpL・IF A 25(1)の誘尋体である03
HのpL@IF A曹10Bを20エニツトのl・・■
と20エニツトのPst 夏とを用いて87℃で90分
間消化し、6チポリアクリルアきドゲルを用いて電気泳
動にかけたO(〜3900塩基対の)大音いベタター断
片を電気泳動溶出によシ回収したQこのように調製した
0、1B4gのベクターJl 11 B塩基対の1lu
RI−Eail  IFN−rDNム断片を結合した。
&U… K−12株鵞94(ムチCCAB14411)
を形質転換して120@のテトラサイクリy耐性コa=
−を得た。これらのトランスホーフッ160個力、らプ
ラス々ドDにムをa製し、石RI及びPnlで消化しえ
。これらのプラスミドのうちの3Illiが所望の11
1暴塩基対N31 RI−PJ 1断片を含んでい九o
DNム配列の解析によ〕、これらのプラスきドが、sr
ジブロモ−ター、合成りNム及び@DNム間の結合部に
所望のヌクレオチド配列を有する仁とが確認され九〇こ
れらのプラスイドの1つpIFN−r 捲4 IIを選
択して更に研究を続は九・咳プツスミドを用いてE、蝕
…r[−12株wa11o(ムTCCA27325)を
形質転換した◎ 1、IFN−rtJ−ド る  の遺   造IPN−
rをコードする遺伝子の構造をS・mtk@r墓ハイプ
リダイゼーシ曹ンによって解析し九Qこの方法−では、
5鰭の高分子量ヒトリンパ球DNA(5J$の如<pl
m>を種々の制限エンドヌクレアーゼで完全消化し、1
.0パーセントのアガロースゲルを用いて電気泳動にか
け−、ニトロセルa −メフイルターHKmk抹した・
1lp−標識DNムプブープをP6−の挿入・DNムの
600 bp論I 断片から調製し−、エト買セルp−
スに移し九DNムとハイブリダイズした輔。1分関轟f
i 10”カラン)07’ll−プを16時間ハイブリ
ダイズし、前記@O如く洗浄し九〇別々の提供者から得
た8個OゲノムDNAナングルを制限エンドヌクレアー
ゼlamlll で消化し、p s e  ”P−al
織7’*−フトハイプリダイズした・第−mllに示す
如く、2個の明白なハイツシメイゼー17N/Vグナル
が見られたQ凪−厘 消化λDNムとの移動度比較によ
れば、これらは夫々、&暮キー塩基対06シ)及・びL
OWhyを有すると推定されたOこれ紘、3個のIFN
−r遺伝子があるか、又は1備O遺伝子が3iBRI郁
位によって切断(aplit )され九結果であろうO
ν@I*D)iAが1蝕R1部位な會壕ないので、1個
の遺伝子を発蝙させるに線内部Jj!凰1部位を有する
介在配列(イントロン)が必要であつ九〇これらの可能
性を見分けるために、具なる他の5積のエンドヌクレア
ーゼで消化し九1側のヒトDNム(−第10図)K対し
て同じプローブを用いてS・wtk@rmハイプリダイ
ゼ−1/Wンを奥施し九〇3110他のエンドヌクレア
ー−V辷咀1.患」■で−は夫々2個のハイブリダイズ
DNム断片(h厘ではt 7 khpと4.0kbp、
H1m*I で紘& S kbpとL Q 1ds) 
)が見られ九〇しかし乍らS@Oエンドヌクレアーゼ−
組シη1.JLamHIによる消化パターンでは夫々1
個のハイブリダイズDNム断片(担躬厘では9.0kk
ν、−4厘 で社11.各ip。
11amHIでae、smp)Lか得られなかった。
同−l−厘ハイプリダイズ断片に會すれるためには2個
0IFN−r遺伝子が異常に接近して(il、016シ
未満)結合していなければならない。
この結果よシ、ヒトゲノムDNムには(多数存在したI
FN−α遺伝子と違って)ひとつの同質O(homol
ogoua ) I FN−r遺伝子が存在しておシこ
の遺伝子がNeo RI * E!11 L 馳1  
部位を含む1個以上のイントロンによって切断されると
推定される・この推定を確認するために、P69から得
た@DNA03’−未翻訳領域のみから調整し九1lp
S*断片(第6図の860番目から990番目箇での1
80塩基対の身性I断片)を1gRI 消化し九ヒトゲ
ノムDN五にハイブリダイズし九@。
10kbplssRI  断片のみがこのグローブにハ
イブリダイズし九〇このことは、この断片が3′−未翻
訳配列を含んでおJ) 8. II 1d+p 11g
3 RI断片がs/−配列を含む仁とを示す。IFN−
rc)遺伝子構造(少くとも1個のイン)ms7を有す
る1個の遺伝子)は、IFN−α(イントロン−)を有
さない多数遺伝子(mult1pl@g@ngs ) 
(2) )又はIFN−β(インドシン−を有さない1
個の遺伝子)と明らかに興なっているO J、岨亀隻巨艷(罠艶 寥s9/−のテトラサイクリンを加え九Ls+riiプ
ロスで1晩培養したji、 恕il W3110/pI
FN r1aL4 gを、O,! Xのグルコースと0
5Xのカザき)酸とss9/−のテトラサイクリンとを
含むMll@培地に希釈度1:100で接種した@ムl
−0が0.1乃至0.2のときにjlllml[2Gμ
g/−になるまでインドールアクリル@を添加した。ム
−1・=1.0で遠心して10−のサンプルを採取し、
11v/−のクシ崩清アルプンンを含む111IIの燐
酸塩緩衝食塩水(PH1−18ム)に直ちに再懸濁させ
た。
超音波で細胞を破砕し残渣を遠心で除去した@アッセイ
(分析)を行なうまで上清を4℃で保存し九〇myii
i変性効果(CPり阻止アッセイで標準IFN−αと比
職すると、上清中のインターフエ四ン活性は意50ユニ
ット/−と測定され九。
K、酵母の形質転換/ 株及び培地 酵母菌を既111f4に準じて形質転換した0!・刺」
株Jム300 (thr 1sm Ba thi wム
☆01117 hmkr−艶! li”−sir” )
 @を用いて発現能のあるTRPI遺伝子を含むグラス
ミドを選択した。遺伝子型(a虫1 耐重8UCm m
aI CUP 1.) ut有すル11fi曹RH11
8を酵母形質転換宿主として使用した。11121mは
、アメリカン・メイズ・カルチャー・コレタション(ム
TC044407g )にを託されている。018%の
カザミノ酸(Cムム)を含むM−(最小栄養検電)及び
LB(!jラッチ地)は、Mill・r@によって記載
されているように、培地をオートタレープで処理し冷却
してからg o s9/−のアンピシリン(81vIm
)を添加して得られた。
下記の培地によって酵母を増殖させた◎IXO$母抽出
物と2%のベグトンと!にのグルコース、これに所望に
よりs%Dlfeo @天とを含むYEPDIL中Kt
1gの酵母窒素塩基(アミノ酸非含有)(YNB ) 
(Ditea )と10Mgのアゾ=ンとl0IIFの
ウラシルと易foCムムと20gのグルコース1これに
所望によりsoyの寒天とを含むYNl+Cムム。
L、  母  ベクターの 1.1049のYR,7(14、15、j6 )をlc
o 311で消化した。得られ7tDNムの付着末端を
DNAポリメラーゼ1 (Kl@nov断片)で平滑末
端化した。ベクターと挿入物とをINの7ガロース(8
・1−m)グルに−流し、グルから切り敗や、電気泳動
溶出して等容量のクロロホルムとフェノールとで2回抽
出し、エタノール沈殿した。得られた平滑末端DNA分
子をiIk終容量50声tで12℃で12時間結合させ
た。この結合混合物(111stlon mix )で
J、 aoli  株JA300をアンピシリン耐性及
びトリプトファン原栄養性に形質転換し九。夫々反対の
方向を向いた[「夏遺伝子を含むグラスミドを単離した
。p FRW 1はYR,7と同方向のTMI遺伝子を
有してお’) 、P FRS%’ 2はYR,7と反対
方向を向いたTRP I遺伝子を有していた。
gustの、 raw xをHlm lで直線化し、I
Xの7ガロースゲルを用いて電気泳動にかけた。直線状
分子をゲルから溶出し、次に200n9を、#母3−ホ
スホーグリセリン酸キナーゼ遺伝子を含む制限断片であ
るグラスミドpB1 (l場の3.!b!!jml挿入
暢5GOn9と結合させた。結合混合物を用いて旦4担
株294t−アンピシリン耐性及びテドラナイクリン感
受性に形質転換した。このような組換体の1つからll
l製したグラスミドは、テトI)サイクリン耐性遺伝子
のHand 1部位に、B1挿入DNAのL 1 kb
p Hlnd l断片を有する完全なy1遺伝子を有し
ていた。このグラスiF′は、PRM S 1 テある
。5膚すの、IPRM N lをlco、iL菫で完全
に消化し、フェノール及びクロロホルムで3回抽出しエ
タノール沈殿した。夫々250μMのチオ中ジヌクレオ
シドトリホスフェートを用いた反応でDNAポリメラー
ゼI (Kl@nov断片)を田【△イA工め針善会−
を兜増り走。反応114℃で20分間継続後、フェノー
ル−クロロホルムで8同抽出し、DNAをエタノールで
沈殿させた。
次KDNムを含む再懸濁液をC1m lで完全に消化し
、6Xアクリルアミドグルを用いて電気泳動にかけ九。
ベクター断片をゲルから溶出し、フェノ−ルーフ冒ロホ
ル”ム抽出し、エタノール沈殿した。
ヒトから精製し友3−ホスホグリセリン酸キナーゼ酵素
の6個ON−末端アミノ酸は下記の配列を有していた。
1−2−1−4−!1−8 SIR−LEU −J31R−SIR−LYE −I、
NU −141塩基対の旦具8A−gauJIA制限断
片のDNA配列から生成した翻訳解読フレームの1個は
、(内部用胚一部位を含む。第11図のとi制@マツプ
参照)下記のアミノ酸配列を生成する。
1−2−3−4−5−6 MET−8ER−1,NU−BKB−8IR−LY8−
LIU−イニシエーメー念るメチオニンヲ論〈トPGK
N−末端アオノ酸配列は、ヒトPC!KC)N−末端ア
ンノ酸配列と5乃至6個のア建ノ酸と相同(homel
og)を示した。
この配列決定によシ酵母PGM構造遺伝子の起点が、p
H4D141塩基対jlLL3 A制限断片中のDNA
によシブードされると推定できる・従来の研究(至)で
は、PGK ndtNA  t−特定化するDNA配列
がH1d厘断片のとの領櫨に存在するであろうと推定さ
れていえ。更に141塩基対Saw 8 A断片の配列
にはよ〕多くのPGKプロモーターのDNA配列が含ま
れている(第1雪図)。
配列蕃′−ムTTTGTTGTAムム−3′を有する合
成オリゴ買クレオチドを標準法によシ合成した(Cr@
a他、Nwslei−ム@1dsB@s、、8. 23
31(1880)  )*  1 0 0ngOプライ
!−の5′−末端をgoatの反応液中で雪@ @ J
IClのCr−5ap”Jhrp及び1Qx=ツトの!
4ポリ翼クレオチドキナーゼでIIIIIした0この機
織プライマー溶液を用いてプライマー修復反応(prl
mr −r@%lr r@aet1on )を11施し
た。この反応は、PGK構造遺伝子配列の直前に位置す
るム痣S′−フランキンクDNムに胞−■制限部位を入
れ墨多段階プロセスの第1!IIである。
1100JIノpH1r1iJを一厘で完全消化し6%
のボリアクリルアオドグルで電気振動する。エチジウム
染色ゲル上の最上部のバンド(PGK7’ロモーター領
域を含む)を前記の如き電気泳動溶出によプ単離した。
このDNAの120G塩基対旦吐璽断片をHlnt I
で消化し、次に6Xアクリルアにドゲルで電気泳動した
。電気泳動溶出によシSSO塩基対のバンドを単一し丸
。5μすのDNAを単離した。DNAの6so塩基対k
h* I −IUn。
量断片を110 Al−0HsOに再度輔濁させ、次に
mostoH記の燐酸化プライマー溶液と混合した@こ
の混合物をフェノール−クロロホルムで1回抽出し次に
エタノール沈殿させ友。乾燥したDNAをSOμtの山
0に再度S浦さぞ、次に沸騰水浴て7分間加熱し友、こ
01液をドライアイス−エタノール浴で(10乃至20
秒間)急冷し、氷水浴に移しえ。次に、この溶液に、1
0μLのDNムポリメツーゼ■の10倍緩衝液(ilo
*hri−ψr Manah@im )とデオキシヌク
レオシドトリホスフェート(4ムTP 、 dTTP 
、 dGTP及びdC’rP)’&:夫夫λ5mMにし
plosttDflt液と25sLの山0とli!Lニ
ットのDNAポリメラーゼI Klenow断片とを含
む溶液50μLを添加した0このZo。
μLの反応滴液を37℃で4時間インキュベートしえ。
次K111m1をフェノール−クロロホルム抽出し、エ
タノール沈殿し、凍結乾燥して10ユニツ)(D8aw
3ムで完全に消化した。溶液を6%アクリルア建トグル
で電気泳動した。39塩基対のナイスに相当するバンド
をゲルから切取シ前記の電気泳動溶出で単一した。この
39塩基対のバンドは1個の平滑末端と1個の旦53ム
付着末端とを有する。この断片を改造し* 、PIF■
 69ベクター(11にクローニングした。10μσの
、?!?強@ 9 ヲXb& Iで直線化し、フェノー
ル−クロHホにムで1回抽出し、エタノール沈jlした
。ヌクレオシドトリホスフェートを夫々250μM含む
5Oalの反応溶液中でDNAポリメラーゼIK1@n
ov断片を使用してXml付着末端を充填した。
このD N A f j!MLHIで切取p6Xアクリ
ルアミドゲルで電気泳動した。ベクター断片を電気泳動
溶出によってゲルから単離し次に20sLの迅0に再t
S濁させた。20mgのこのべりl−と前記で調製した
20n9のs9塩基対断片とを室温で4時間結合させた
。結合混合物の号量を使用してL (1011株294
 t(Ll+20 、a1g/dampプレート上で)
アンピシリン耐性に形質転換した。トランスホーマント
から得たプラス々ドをクイックスクリーンブーセス(q
uick serm@n proo@dwr* )−で
テストした・配列解析の九めにプラスミドpPQK−3
9を選択した。20μすのプラスミドt−Jbalで消
化し、エタノール沈殿ill OOGユニットの細■由
来アルカリ性ホスファ!−ゼと共に68℃で4s分間処
理し良。DNムを3回フェノールーク四ロホルム抽出し
、エタノール沈殿させた。!00sCiのCr−!寺P
lムTPと11SL=ツトの一ポリ翼タレオチド中ナー
ゼさを含むHo5tの反応潜液中で脱リン酸末端t−標
識した・プラスミドを1eJIで切断し@L!Xのアク
リルアミドゲルで電気泳動し九〇 標識し九挿入バンドをゲルから単離し、Maxam−G
H1nrt法1i1によって配列を決定した。このプ冒
モーター断片Os′−末端のDNム配列は予想通シであ
った。
25sfiのppoic −39(第13図)を(夫々
5エニツトの) JLLL Iとx−!とで同時に消化
し6%ゲルを用いて電気泳動にかけた039塩基対のプ
ロモーメー断片を含むs9o塩基対のバンドを電気泳動
溶出により単離し友。再懸濁DNムをBa!13ムで消
化し、8Xアクリルアイトグルを用いて電気泳動にかけ
た。39塩基対PGKプロモーメーバンドを電気泳動溶
出によ)単一し友。こ0DNAは、lツ8 A −:4
JHI断片fcPGKグロモーメ−の5′−末端のS−
塩基対を含んでいた0284g(DpBlをblと&!
11とで消化し、6Xアクリルアミドゲルを用いて電気
泳動にかけた。DNムの0.8 kbyバンドを電気泳
動溶出によシ単離し、h!3ムで消化して、6Xアクリ
ルアイトグルを用いて電気泳動にかけ虎。PGK、;’
Elモーターから得ft2ahbpバンド(第11図)
を電気泳動溶出によシ単離し友。
次に、このDNムと前記のB9bpプ關モーター断片と
を室温で2時間給合し友。結合混合物を1−1と上四璽
とで消化し、sXアクリルアミドゲルを用いて電気泳動
にかけた。812bpX■1−b1断片を電気泳動溶出
により単離し、これをg00vs9の(先に単離し喪P
vu I −Pat 1162塩基対断片の欠如した)
 plR32214jと、200 *fiO’jQ31
−Pat I L@IFA aDNA遺伝子とを含む結
合混合物に添加した。このL−IFムoDNム遺伝子は
先にgustのPL@IF *rpAg5から単一され
ている。この3因子結合混合物を用いて& (1011
株294をテトラナイフリン耐性に形質&換り九。トラ
ンスホーiントコロニーtZニスクリーニングし−、コ
ロニーの1つ、即ちPBR322をベースとするベクタ
ー中でIa I Fム遺伝子に融合した304塩基対の
p Q K 5’−フランキングDNムを有するpPG
K300を単層した。L・!Fム遺伝子のS′−末端は
、配列5’−CTムGAAT’rC−3′を有する。従
ってこの配列にPGKプロモーメー断片からxh菖部位
が融合すると、X艶1部位にEgo B 1部位が付加
することが可能になるO従ってpPGK −800はP
vu l −[66R1断片中に単一され九PGK7’
ロモータ一部分を含む。
10s9のpBlをPvwl及びEgo RIで消化し
6%アクリルアミドグルで電気泳動しな。1?lkbの
!!!l I  IjJI RI DNムバンドをP 
G K 5’−フランキングDNAから電気泳動溶出に
よp単一した。
10 jgopPGK−800を’1m B I及び−
Iで消化し、sXアクリルアイドゲルを用いて消化混合
物(社−5t1on m1x)を電気泳動Kかけ、次に
電気泳動溶出して312bpのプルモーター断片’に単
離した。 B s 9 OpPRL 4 t−11LI
RI テ切断し、エタノール沈殿させ、68℃で細菌由
来アルカリ性ホスファターゼで48分間処理L&。フェ
ノール/クーロホルムで3回抽出し、DNAt−エタノ
ール沈殿させ、2G−の110に再懸濁させ友。
100mgのベクターを、pPGK−300から単離し
た100mgの312bpのEgo RI −Rxx 
IDNA−Pillから単離しft l 00 n 9
のE(10嵐1−Pvul DNAと結合させた・結合
混合物を用いて!−!株294をアンピシリン耐性に形
質転換した@得られたトランスホーマントの1つがpp
aic−1800であった。この7#ラスミドは、DN
Aの鋤RI−l遠Rf又は」−厘一旦υR1断片として
11iOGkp  0PGKプロモ一ター断片を含ん、
でいた。
1osyのpPGK−1500をシI及び′FtBR■
で完全消化し、消化混合物を6%アクリルアミドグル電
気振動にかけた。電気泳動溶出によシPGK2aモーl
−を含む900 hpの断片を単離したe  10 A
9(DpIFN−r try  48tM!jRI及び
−厘で完全消化し、6Xアクリルアミドゲル電気泳動K
かけ良。電気泳動滓出によル直接発現できるIFN−r
 @DNAを含む98111+p OAン)”がゲルか
ら単離された。
(聾1 1caeil鳳断片上・の)PGKグロモーメ
ー断片と欠失p?RM−alと前記の単@1FN−ra
DNムとを8断片結合反応によって酵母発現ベクターを
構成した。結合反応は14℃にて12時間行なわれた。
次にこの結合混合物を用いてjLoo且株2,94をア
ンピシリン耐性に形質転換し友。トランスホーマントを
分析し、適正な構成の発現グラス建ドpPGK−IFN
−r の存在を確認した(第16図)。発現系を含むグ
ラス建ドを用い、トリブトファン欠失寒天中で酵母菌B
H2111(Dスフェロプラストをトリプトファン原栄
養性に形質転換した。これらの組換酵母に対し、免疫イ
ンメーフ工冒ンの存在を勇べるアッセイを夾麹したつ酵
母抽出物を下記の如く調製した。10−の培養液t’Y
NB+cAム中でム・・・さl−2まで増殖させ、遠心
によp集め、SOOμtのPB811衝液(gomM 
 NaH電PO番epH=7.4  、 150mM 
  NaCt)  に再懸濁させた。等容量のガラスピ
ーズ(0,45−0、m w )を添加し、混合物を2
分間攪拌した。抽出物を1400 Orpmで30秒間
遠心し、上清を堆出し友。CPl阻止アッセイを用いて
標準IFN−αと比做すると、上滑中のインメーフエロ
ン活性の一定値di@、000エニット/−であった。
k セルカルチャーベクJ −p8Vr 69の構成り
V40ytQt)ンf含tr842bp 0H1ndl
 −h厘断片をlee RI制限部位末端を有する断片
に変えたe四曵璽部位に合成オリゴv−(5’−−ムG
C’f’GムムTTC)を添加して、ポリメラーゼ1(
El・mow @片)を作用させて充填し、ヱジ厘部位
は平滑末端結合によって呈L) R1部位に変えた。
得られた1JR1断片をpML−1@OIce R1部
位に挿入しえ。、工、Rffi伝子に逆向きとなる5v
4091期グロモー!−を有するグラス建ドに於いて、
シME、−1mのampi遺伝子に最も近い鋤81部位
を除去してこのa、−遺伝子を更に改造した。
りa−ンHBV DNA−0101SbpOHpa I
 −−33断片を単離し、ml!Jf炎つ(ルス(HB
V)O!!1=Ii1位を合成オリゴ−r −(轟’−
dGcGAATTcGc )で!恕gig位に転換した
。このBoo R1−シビ厘の付いた断片を8V40の
オリジンをもつ前記プラスミドのgco RI −Ba
mH1部位に直接クロー二ンクした。
pallの1250bpPstl断片に於いて加1末端
を110 RI末端に転換し、残りのNeo R1部位
にIFN−r遺伝子を挿入した。IN’N−1の構造遺
伝子の前にBY40後期グロモーIを有するクローンを
単離した。DICムE−テキストランの存在中でトラン
スフェクションを8時間行なうように改変し喪DIムE
−デキスト2ン法−を用いて、前記で得られたグラス建
ドを組織培養細&I@に導入し友。細胞培地を2〜3日
毎に交換した。毎日200sAfつ取申してインメーフ
エpンのバイオアラ*4を行txつ九。トランスフェク
ションの8〜4日後に検定したサンプルでの典型的な収
率は50乃至100ユニット/−であつ友。
N、  tル細龜由来免疫インターフェ費ンの部分精製 ナル細胞がりくるヒ)IFN−rをよシ多量に製造する
ために、10個の10cs+プレート内の新しい単層C
o5−7に%  110doDIAI−T’F ストラ
ン(200sfl/−のDIAICデキストツ> 50
0,000MY、&OIMO)すx、p?、!i、DM
IM中)中の総量8049のpDLIFlをトランスフ
ェクトし虎。37℃で16時間維持し、プレートをDM
IMで8回洗浄し7t、10Xのf4s*と1mMのグ
ル/電ンとmos9/−のペニシリンQを加えた11s
tQ新しいDMlijMを補充し、次に50wv/dの
ストレプトiイシンを各プレートに添加した。
翌日、培地を血清を含まないDMIMに代え良。以後、
この血清を會tない培地を毎日新しく添加した。収集し
た培地をアッセイを行なう迄又はCPGに結合する迄4
℃に維持した。トランスフェクションの3〜4日後のサ
ンプルからプールした一分は活性をほぼ全部含むことが
判明した。
αigのCPG(コンドロールド−ポアガラス、11*
*tremul@onb+s、CPG85G、メツシエ
ナイズ120/goo)Yttoo−の細胞上清に添加
し、混合物を4℃で3時間攪拌した。ベンチトップ遠心
機で短時間遠心し、沈降ビーズをカラムに詰め、20m
Mリン酸ナトリウム(Na1PO4e Na愈HPO4
@NaH1PO4又はPI3) 、 IM  NaCt
 、  0.1 % / −メびSONのエチレングリ
コールを含む前、記緩衝液( を順次用いて活性を溶出させ良。flは全部の活性がC
PGに付着していた。7s%の溶出活性は、30%エチ
レングリコールで溶出した両分中に存在した。これらの
画分をプールし20mMリン酸ナトリウム、IM Na
C1,、p!(7,11で希釈し最終濃度をエチレング
リコール10%にして、10−のCotムセファ四−ス
(Pharmaclm )カラムに直接かけ7j、20
mMリン酸ナトリウム、I M NaCA 。
pHV、2で完全洗浄後、20mMリン酸ナトリウム、
IM)JaCj 、  O,jiMα−メチル−3)−
vンノサイドで活性を溶出し喪。かなりの量の活性(5
5%)がこのレクチンに付着しなかった。α−メチル−
p−−vンノナイドによって45%の活性71出し友。
薬剤組成物 薬剤として有用な組成物を製造する丸めの公知の方法に
準じて本発明物質を製剤化し得る。即ち1本発明によp
得られたヒト免疫インターフェロン産生−を、薬剤上許
容し得る賦形剤と混合組合せる。適尚な賦形剤及びその
製剤イヒはIAa W、 Martlm。
IknilHtonのPharmc*tstloal 
8ai嗜nc*−に1載されている。この書物を参考文
献としてここに引用する。このような組成物は、宿主に
有効投与するのに適した薬剤上許容し得る組成物をl1
lilIlするために有効量の本発明のインターフェロ
ンタンパク質を適正量の賦形剤と組合せて得られる。
ム・ 庄鮭旦翌1 本発−のヒト免疫インターフェロンを、抗腫瘍治療又は
抗ウイルス治療を畳する患者、又は、免疫抑制状線を示
す患者に非経口投与し得る。用法及び用量は、他のヒト
インターフェロンの臨床研究で常用の用法及び用量に準
じる。例えば日用量約1乃至10XIO一単位で使用さ
れ、純度1%より下と考えられる物質は従来と同様に例
えばl5OXIO@単位/日で使用される。IFN−r
以外のヒトタンパク質即ちヒト由来物質中に存在すると
成る種の好ましくない作用を生じる恐れのあるタンパク
質が#1!ホ全く混在しないので、効能を良くする九め
にIFN−rの用量をかなり増すことができる。
はぼ同型のIFN−rの非経口投与に適し友剤形の一例
としては、特異的比活性例えば2 X 10’U/)の
IFN−r 8 WIIiを25−05N血清アルプ建
ン(ヒト)−U8PKm解し、溶液を滅菌フイルメーに
通し、P遇し九溶液を無菌的に100本のバイアスに分
注する。各バイアルは、非経口投与に適し丸軸インター
フェロン4i X 1 G@単位を収移している。使用
するまでバイアルを低温(−g。
C)保存するのが好ましい。
抗体中和のために、必要ならば、テンプルをpBs−i
sムでI!00〜1000単位/d(Dlllfl”?
”希釈する・希釈度を順次増加したラビットの抗とト白
皇球、lll1m芽細胞又は免疫インターフェロン抗血
清を夫々用い、等容量ずつのサンプルを4Cにて8〜1
1時間インキュベートし友。NatiomlImtlt
mt@d All@rgy aIuIIm*etiom
 D釉@&@@@  から抗−IFN−αと−Iとを入
手し虎。胸激末檜皇リンパ球から精製し九(純Is〜2
0〜)の標準IFN−rを用いて抗−rrw−rt−調
製した。アッセイを行なう前にサンプルを12,000
)lで3分間遠心した。…2の安定度をテストするため
にアツ*イMmFcINklC1を添加してテンプルを
p!12に調整し、4℃にて2〜12時間インキュベー
トし、I NNaOH’ft添加して一中和した。ドデ
シル硫flttト9クム(8D8)感受性をテストする
ためにアッセイ以前にサンプルを等容量の0.2%BO
Bと共に4℃で2〜12時間インキュベートした。
フィルス活  ユニット/−) この表は、種々の熟珊後の標準IFN−α、!、ro作
用特性を示す。g、 eoli WTl 10 /p 
I FN−r”34m及びCog−17pBVr61に
よシ産生じたインターフェロン活性は、酸感受性、sn
gg受性であ)免疫インターフェロン抗血清により中和
されるが、IP!f−(1又はlに対する抗体によって
中和されない。これらのデー タより、前記の系に於い
て産生し友イン!−フエqンがIFN−rであシブラス
ミドpsiの挿入aDNムがIFN−1−をロードして
いることが確紹される@ 精製 たとえば細菌等からIFN−rt−精製する一力法を以
下に述べる一般的な大l!に従って記載する。
1、高電導性の溶菌バッファー(約−8,0)中で細胞
を高圧力でホモグナイザー中を通過させ、次いで水浴中
で流出物を冷却することによる、細胞からの抽出、 1 攪拌下例えば約4℃でのポリエチレンーイオン添加
によるDNムの沈殿、 L fa液液中IFN−rを再び残しつり細菌!ンバク
質の−による沈殿除去翫 4、4℃での遠心分離による固相分層、L (−の再調
整後)限外濾過等による上澄の湊縮、 亀 低伝導性バッファによる#細物の透析、L 遠心分
離による同相除去によって、溶液中KIFN−rを残す
こと、 龜 イオン強度を順次増加する溶出法による\カルボ中
ジメチルセルロース上でのイオン交換クロマトグラフィ
ー、 9、イオン強fを順次増加する溶出法による、燐酸カル
シウムグル上でのクロマトグラフィー、10、イオン強
1ft−順次増加する溶出法による、弱い変性条件下で
のカルボキシメチルセルロース上イオン交換クロマトグ
ラフィー、 11、  ゲル濾過クロマトグラフィーによる分離。
この方法によれば、90X以上更に95%以上O#1[
を有する物質の精製が可能である。
本発明の免疫インターフェロンメンノくり質の構造は、
DNム遺伝子を決定し、それに基いてアミノ酸配列を決
定することによって解明されたー第s図参照。本・文に
記載したこの特定インターフエ四ンについて自然に起こ
った相同変異(all・llaマar1ation )
存在しこの変J!が個々人の間で起こることが理解され
るであろう。これらの相同変異は、ある場合には全体配
列中の1個(又its数)のアミノ酸の違いにより示さ
れ、又める場合には該配列中の1個(又は複数)のアミ
ノ酸の欠失、tii換、挿入、転位又は付加によp示さ
れる。このような相同変異の全部が本発明の範囲内に包
含される。
実際、種々のヒ)IFN−r9導体の製造に組換えDN
A技術を使用することに大きな可能性が存在する。この
誘導体は単一の又は多数のアミノ酸の置換、欠失、付加
又は順序の置き換えによって穐櫨修飾され次ものである
。これらヒトIFN−r’lll導体を生成する前記の
ごとき修飾は全て、基本的な特性であるヒ)rFN−r
活性が不変のtま残っている限り、本発明の範囲に含ま
れる。
上記IFN−r f7) D NA及びアばノ酸配列(
第5図参照)を用いて、本発明を疑いを残さずに追試す
るのに最適な方法は、(例えば26に示すごとき)合成
手段による完全な遺伝子の製造であシ、又は合成デオキ
シオリゴヌクレオチドを製造し、この合成デオキシオリ
ゴヌクレオチドをグローブに使って、ヒトゲノムライブ
ラリ又は他のcDN五ソースから、標準的なハイブリダ
イゼーション技術によって目的遺伝子を単離する方法で
ある。必要とするIFN−rメンバク質をコードしてい
るヌクレオチド配列が一旦既知となれば発現をさせ、単
一し、高置の純化したIFN−To製剤を製造する方法
は上記記載の方法株従って実施し得る。
好ましい特定具体例に基いて本発明を説明してき九が、
本発明はこれらの特定具体例に限定されること無く、む
しろ特許請求の範囲の適法範囲に限定されると解釈すべ
きであることも理解されよう。
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57、   Lawn @tm1.. Nucl*io
 Ac1ds fkm、、 9.1045(19111
): 59−  ’B@KK”m N1五μ、居e 104(
1978)−
【図面の簡単な説明】
第1図は、誘発末梢血リンパ球ポリ囚十RNAの70%
ホルムアミド中5−25%ショws密度勾配遠心分−の
結果を示す図、第2図は、篩発未檜血リンパ球ポリFA
)+RNAの6M尿素中1.7B%アガロースゲル電気
振動の結果を示す図、fjg3図ムは、誘発 P−標1
lIcDNAとコロニーとのノ・イブリダイゼーション
パメーンを示す図、jI3図Bは非鱒発32P−標繊a
DNムとコロニーとのハイプリダイゼーシ曹ンパターン
を示す図、第4図は、クローン69の挿入a DNAの
制限エンドヌクレアーゼマツプ、第5図は、プラスミド
969挿入(IDNムのヌクレオチド配列図、第6図は
、38Iのインターフェロン、IFN−α、x yN−
11及びIN’N−rの構造の比較図、第7図は、IF
N−r%現プ2スミド pIFN−r  m4gの構成
を示す説明図、1its図は、ナル細胞でのIii’N
−r発現に用いられるプラスイドの構成を示す図、第9
図は、8種のWoo RI消化ヒトゲノムDNAとpi
eの挿入aDNA ”P−標識クローンとの8outh
@rn /Nイブリメイゼーシ目ンの結果を示す図、1
9110図は、6種の制限工ンドタクレアーゼで消化し
たヒトゲノムDNAと11由来IIp−標識プロープと
の5outh@rnハイプリダイゼーシ習ンの結果を示
す図、第11図は、ベクターpillのLIKhpji
IJM1厘挿入物の制限マツプ、第12囚は、酵母3−
ホスホグリセリン酸キナーゼ構造遺伝子の5′−末端部
及び5′−フランキングDNAl2)DNA配列を示す
図、第13−は、PGKプロモーターにX肪1部位を挿
入し且つP G K 5’−フランキング配列の39b
p断片を単離する工程図、第14図は、プラスイドpP
GK−39から得た39bp断片とpBlから得之26
5bp Pvu I−加3A付加P G K 5’−フ
ランキング配列とpL@IFtrp Aから得たXba
 I KIN接する身性R1部位とを有する300bp
断片の構成を示す図、#!15図は、第14図ノ300
1ep断片に加えてP G K 5’−フランキング配
列から得た1 300bp Hlnd I −Pvu 
1断片を有する1 500 hpPGK70モーター断
片の構成を示す図、第16図は、酵母菌中でヒト免疫イ
ンターフェロンを発現するベクターpPGK −IFN
−rの構成を示す図である。 メニンθ53゜ 一如T−−tcw絵口は〒r+mi鵡頽〔1α11]−
−モ田思唐胴Ii8幣曳謙唱V1四沿出摩引l翼長mm
mWWg獄災(n #1+ ITIA TAT m M
T KA [(iT (AT TCA GAT iA 
OGAT、曽T GGA ID CIT YiCT’l
^(転)^TT Ti1l G6 MT m博G11i
 G11+ IGI%崩廊^得7G(M□CMATr□
tccmχ■繊C市常に■繰りT眞駕虹^【隔隔原価%
 ACCATCA#i、fPKAm MT 1ilc眉
m nCMT g MCM 顧AM ffA 1ilT
 %、Tm QIA MG CTG JUT MT W
 B liTAGM9T#KATCTCAff+lIA
mCAWIiCCAMTA7TGTACffJAATI
i#AGTAICTCATITGITMTP、TCMT
ATCTMnTAThmMTMmiTA11intAC
MC9メツλ9,5 一一 メツ八λ9 メツhλI メ;ンy、 i! 第1頁の続き 21104        7252−4CC12N 
15100        7235−4B@発 明 
者 パトリク・ダブリュ・プレイアメリカ合衆国カリフ
ォルニア 94127サン・フランシスコ・サ ン・フエランド・ウェイ219 150−

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 (1)  成熟ヒト免疫インターフェロンのアイノ酸配
    列を含む、微生物の又はセルカルチャーのポリペプチド
    産生物。 (2)次のア建ノ酸配列; CT4 TYRCT4 GLN ABP PROTYR
    VAL LYS GLU ALA GLU ASN L
    EULYS LYS TYRPRE ASN ALA 
    GLYHIS 8ERALP VAL ALA ASP
     ASNGLY THRLMiU PRE IJU G
    LY ILELEU LYS ASN TRP LYS
     GLU GLUsgg ALP ARG LYS  
    ILE MET GLNSmi2RGLN ILE V
    AL SERPHE TYRPIE LYE LEU 
    PIE LYS ASN PHELY8 ALP AS
    P GLN SERILE GLNLY8  SERV
    AL GLU Tl1RIIJ LYSGLU ALP
     MET ASN VAL LYS PHEPHICA
    SN SIRASN LYS LYS LYSARG 
     ALP  ALP  PHI  GLU  LYS 
     LEUTHRASN  TYR8ERVAL THR
    ASPLEU  ASN VAL  GLN ARG 
     LYS  ALAILE  HIS  GLU  L
    EU  ILB GLN  VAL¥ET  ALA 
    GLU LEU  SERPROALAALA  LY
    S  THRGLY  LYS  ARG  LYSA
    RG  SIRGLN MET  LEU  PHE 
     ARGGLY  ARG  ARG  ALA  S
    ERGLNを有することを特徴とする特許請求の範囲第
    1項に記載のポリペプチド産生物。 (3)天然のグリコシレージョンを伴っていないことを
    特徴とする特許請求の範囲第1項又は第2項に記載のポ
    リペプチド産生物。 (4)  前記インターフェロンの正常な第一アミノ酸
    ON−末端にメチオニンが結合していることを特徴とす
    る特許請求の範囲第1項乃至第3項のいずれかに記載の
    ポリペプチド産生物。 (5)前記インターフェロンの正常な第一アミノ酸ON
    −末端に開裂可能な共役タン、eり又はシグナルタンパ
    クが結合していることを特徴とする特許請求の範囲第1
    項乃至第3項のいずれかに記載のポリペプチド産生物。 (6)次のア建ノ酸配列; MICT LYS TYRTHRSERTYRILEI
    JU ALA PHI GLN LEU CT4  I
    LEVAL LEU GLY SIRLEU GLY 
    CYSTYRCT4 GLN A8P PROTYRV
    ALLY8 GLU ALA GLU ASN LEU
     LYSLY8  TYRPI(E  ASN  AL
    A GLY  )IIsSIRASP VAL ALA
     ASP ASN GLYTHRLFU PHI LE
    U GLY ILE LEULYSASN TRP L
    YS GLU GLU SERム8P ARG LYS
      ILE MET GLN 8ERGLN ILE 
    VAL S′ERPHE TYRPHELYS  Lg
    tr PHE LYS ASN PHE LYSA8P
     ASP GLN 8ERILE GLN LYSSI
    RVAL GLU THRILE LYS GLUA8
    P MET ASN VAL LYS PHE PIE
    人SN 8ERASN LYS LYS LYE AR
    GムfiP A8P PHE GLU LYS LEU
     Tf(RA8N TYRSERVAL THRASP
     L)iUA8N VAL GLN ARG LYS 
    ALA ILEHIS  GLU  LEU  ILE
      GLN  VAL  METALA  GLU  
    LEU  SERPROALA  ALALYS  T
    HRGLY LYS  ARG LYS  ARGSI
    RGLN MET LEU PHE ARG GLYA
    RG  ARG  ALA  SERGLNを有するこ
    とを特徴とする特許請求の範囲第5項に記載のポリペプ
    チド産生物。 (7)  前記ポリペプチドの相同変異に相当する部分
    構造を有することを特徴とする特許請求の範囲第1項乃
    至第6項のいずれかに記載のポリペプチド産生物。 (8)  成熟ヒト免疫インターフェロンのアばノ酸配
    列を含むポリペプチドをコードする配列を有するDNA
    配列。 (9)前記ポリペプチドをコードする配列が、次のDN
    A配列; TGT TACTGCCAG GACCCA TATG
    TA AAA GAA GCA GAA AACCTT
    AAG AAA TAT TTT AAT GCA G
    GTCAT TCA GAT GTA GCG GAT
     AATGGA ACT CTT TTCTTA GG
    CATT   =TTG AAG AAT TGG A
    AA GAG GAGAGT  GACAGA  AA
    A  ATA  ATG  CAGAGCCAA  A
    TT  GTCTCCTTT  TACTTCAAA 
     CTT  TTT  AAA  AACTTTAAA
      GAT  GACCAG  AGCATCCAAA
    AG  ACT  GTG  GAG  ACCATC
    AAGGAA GACATG AAT G、TOAAG
     TTTTTCAAT  AGOAACAAA  AA
    G  AAACGA  GAT  GACTTCGAA
      AAG  CTGACT  AAT  TAT  
    TCG  GTA 、ACT  GACTTG  AA
    T  GTCCAA  CGCAAA  GCAAAA
      CAT  GAA  CTCATCCAA  u’
    rGムTG  GCT  GAA  CTG  TCG
      CCA  GCAGCT  AAA  ACA  
    GGG  AAG  CGA  AAAAGG  AG
    T  CAG  ATG  CTG  TTT  CG
    AGGT  CGA  AGA  GCA  TCCC
    AGを有することを特徴とする特許請求の範囲第8、項
    に記載のDNA配列。 韓 前記ポリペプチドをコードする配列が、次のDNA
    配列; ATGムムムTAT ACA AGT TAT ATC
    TTG GCT TTT CAG CTCTGCATC
    GTT TTG GGT TCT CTT GGCTG
    TTACTGCCAG GACCCA TAT GTA
    AAA  GAA  GCA  GAA  AACCT
    T  AAGAAA  TAT  TTT  AAT 
     GCA  GGT  CATTCA  GAT  G
    TA  GCG  GAT  AAT  GGAACT
      CTT  TTCTTA  GGCATT  TT
    GAAG  AAT  TGG  AAA  GAG 
    GAG  AGTGACAGA  AAA  ATA 
     ATG  CAG  AGCCAA  ATT  G
    TCTCCTTT  TACTTCAAA  CTT 
     TTT  AAA  AACTTT  AAAGAT
      GACCAG  AGCATCCAA  AAGA
    GT  GTG  GAG  ACCATCAAG  
    GAAGACATG  AAT  GTCAAG  T
    TT  TTCAAT  AGCAACAAA  AA
    G  AAA  CGAGAT  GACTTCGAA
      AAG  CTG  ACTAAT  TAT  
    TCG  GTA  ACT  GACTTGAAT 
     GTCCAA  CGCAAA  GCA  ATA
    CAT  GAA  CTCATCCAA  GTG 
     ATGGCT  GAA  CTG  TCG  C
    CA  GCA  GCTAAA  ACA  GGG
      AAG  CGA  AAA  AGGAGT  
    CAG  ATG  CTG  TTT  CGA  
    GGTCGA  AGA  GCA  TCCCAGを
    有することを特徴とする特許請求の範囲第8項に記載の
    DNA配列。 (11)  前記ポリペプチドの相同変異をコードする
    配列を有すゐことを特徴とする特許請求の範囲第8項に
    記載のDNA配列。 (11遺伝子コードの縮重を包含することを特徴とする
    特許請求の範囲第8項乃至第11項のいずれかに記載の
    DNA配列。 (至)前記ポリペプチドをコードする配列が前記ポリペ
    プチドを発現させうるDNA配列に有効に結合している
    ことを特徴とする特許請求の範囲第8項乃至第12項の
    いずれかに記載のDNA配列。 Q4  成熟ヒト免疫インターフェロンのアミノ酸配列
    を含むポリペプチドから主として構成される組成物。 a!9  インターフェロン活性を有することを特徴と
    する特許請求の範囲第14項に記載の組成物。 (1@  ヒト由来の他のタン、eりを実質的に含まな
    いことを特徴とする特許請求の範囲第14項又は第15
    項に記載の組成物。 顛 主として成熟ヒト免疫インターフェロ/のアミノ酸
    配列からなる約9096より高い純度のポリペプチドを
    含むセルカルチャー抽出物であることi4I黴とする特
    許請求の範囲第14項乃至第16項のいずれかに記載の
    組成物。 aυ 成熟ヒト免疫インターフェロンのアミノ酸配列を
    含むポリペプチドを治療上有効な量で含む抗腫瘍組成物
    。 (11非経口投与に適することを特徴とする特許請求の
    範囲第18項に記載の組成物。 ■ 成熟ヒト免疫インターフェロンのアミノ酸配列を含
    むポリペプチドを治療上有効な量で含む抗9イルス性組
    成物。 Ql)非経口投与に適することを特徴とする請求求の範
    囲第20項に記載の組成物。 (財)成熟ヒト免疫インター7エロンのアミノ酸配列を
    含むポリペプチドを治療上有効な量で含む免疫調節治療
    用組成物。 (自)非経口投与に適することを特徴とする特許請求の
    範囲第22項に記載の組成物。 (財)形質転換された微生物又はセルカルチャー中で、
    成熟ヒト免疫インターフェロンのアミノ酸配列を含むポ
    リペプチドを発現し得る複製可能な発現ベヒクル。 (ホ)プラスイドが、、lIpIFN−r−trp 4
    8。 PSV−17−69及びpPGK−IFN−rかうなる
    グループから選択されることを特徴とする特許請求の範
    囲第24項に記載のベヒクル。 (4)成熟ヒト免疫インターフェロンの゛fアミノ酸配
    列含むポリペプチドを発現し得る複M町能な発現ベヒク
    ルで形質転換された微生物又はセルカルチャー。 (財)プラスミドが、p IFN−r−trP 48.
    PSV−r−69及びpPGK−IFN−rからなるグ
    ループから選択されることを特徴とする特許請求の範囲
    第26項に記載の微生物又はセルカルチャー。 (ホ)COS − 7系サル腎線維芽細紀を形質転換す
    ることにより得られることを特徴とする特許請求の範囲
    第26項又は第27項に記載のセルカルチャー。 (イ)大腸菌株(E.coil)を形質転換するζとに
    よシ得られることを特徴とする特許請求の範囲第 −2
    6項又は第27項に記載の微生物。 (至)酵母菌株を形質転換することによ)得られること
    を特徴とする特許請求の範囲第26項又は第27項に記
    載の微生物。 01)ヒト免疫インターフェロンを成熟した形態で産生
    じ得る形質転換細患のカルチャー。 (自)成熟形態のヒト免疫インターフェロンをコードす
    る遺伝子を微生物又はセルカルチャー中で発現させるこ
    とからなる方法。 (ロ)成熟ヒト免疫インターフェロンのアミノ酸配列を
    含むポリペプチドを微生物又はセルカルチャー中で産生
    ずる方法。 c34)複製可能な発現ベヒクルで形質転換された微生
    物又はセルカルチャーを増殖させ、成熟ヒト免疫インタ
    ーフェロンのアミノ酸配列を含むポリペプチドを産生さ
    せ、前記ポリペプチドを回収することがら々る前記ポリ
    ペプチドの製造方法。 (ト)成熟ヒト免疫インターフェロンの゛アミノ酸配列
    を含むポリペプチドをコードする第−DNA配列を構成
    し、第−DNA配列を発現させ得る第二DNA配列と有
    効に結合させることからなる。形質転換された微生物又
    はセルカルチャー中で前記ポリペプチドを発現し得る発
    現ベヒクルの製造方法。 (以1・余白)
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