WO2010095469A1 - イムノクロマト法によるアレルゲン検出方法 - Google Patents

イムノクロマト法によるアレルゲン検出方法 Download PDF

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加藤重城
秋元政信
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プリマハム株式会社
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    • G01N2800/00—Detection or diagnosis of diseases
    • G01N2800/24—Immunology or allergic disorders

Definitions

  • each allergen is extracted from a test sample such as food containing various allergens using an anionic surfactant and thiosulfate, and each allergen is in any denatured / undenatured state. Efficient extraction with an anionic surfactant and thiosulfate, or an anionic surfactant and a nonionic surfactant, and further suppresses non-specific reactions associated with the collapse of colloidal gold bound to the antibody.
  • the present invention relates to a method for detecting an allergen by an immunochromatography method that can be detected at once, and a detection kit for an allergen for immunochromatography that can be used therefor.
  • an immunoassay method for detecting a target substance comprising a specific antigen or antibody using a specific reaction by an antigen-antibody, a target substance in a sample
  • An agglutination method that binds an antibody or antigen sensitized to microparticles by an immune reaction and measures the aggregation state of the microparticles resulting from the binding is a simple immunoassay method, and is generally used because it can be visually judged. It is the method that has been.
  • a radioimmunoassay method or enzyme immunity method in which an antibody or antigen labeled with a labeling substance composed of a radioisotope, an enzyme or a fluorescent substance is bound to an analyte in a sample by an immune reaction, and the bound labeling substance is measured.
  • Measurement methods or fluorescence immunoassays are also employed. In these immunoassays, competitive reaction and sandwich reaction are widely used. Of these, immunochromatography is known as a so-called sandwich-type reaction measurement method (see, for example, Patent Document 1).
  • sandwich-type reaction measurement method see, for example, Patent Document 1
  • Allergen detection kits are sold.
  • Samples applied to such immunochromatography include biological samples and extracts from foods, but depending on the type of sample, a so-called non-specific reaction that shows a light color at the capture site despite the absence of the specimen. May cause a decrease in accuracy in inspection. Therefore, the buffer contains a polymer having a phosphorylcholine group at a concentration of 0.005 to 0.3 w / v%, and the number average molecular weight of the polymer is 40,000 or more.
  • Patent Document 2 that prevents non-specific aggregation and non-specific reaction during measurement and thus enables measurement with high accuracy.
  • Applicant can extract allergens quickly and accurately by suppressing non-specific reactions associated with colloidal collapse of gold colloids, even when extracted using an extraction solution containing a denaturant and a reducing agent and adapted to immunochromatography.
  • the immunochromatography method which can be performed is proposed (for example, refer patent document 3).
  • allergens were sufficiently extracted from a heated test sample and further tested by a simple immunochromatography method, accuracy and simplicity could be dramatically improved.
  • the reducing agent used (2-mercaptoethanol) has a unique odor and 2-mercaptoethanol has been designated as a toxic substance on July 1, 2008. Has become difficult. Therefore, there has been a demand for a safer and more efficient extraction method and an immunochromatography method that can be accurately tested without any non-specific reaction when these are applied to the immunochromatography method.
  • An object of the present invention is to use an anionic surfactant and a thiosulfate or an anionic surfactant and a nonionic surfactant from a test sample such as a food containing each allergen. , And efficiently extract with an anionic surfactant and thiosulfate, or an anionic surfactant and a nonionic surfactant, regardless of whether each allergen is in a denatured / undenatured state. Furthermore, we offer a method for detecting allergens by immunochromatography that can quickly and accurately detect allergens by suppressing the nonspecific reaction associated with the collapsing of colloidal gold bound to the antibody, and an immunochromatographic allergen detection kit that can be used therefor. There is to do.
  • each allergen is in any state of denaturation / non-denaturation without using 2-mercaptoethanol, which has been considered indispensable to sufficiently extract each allergen from a heated test sample. Even in an immunochromatography method that can be efficiently extracted with an anionic surfactant and thiosulfate, or an anionic surfactant and a nonionic surfactant, It has been found that the use of a developing solution containing (FBS: fetal bovine ⁇ ⁇ serum) can solve the above problems, and the present invention has been completed.
  • FBS fetal bovine ⁇ ⁇ serum
  • the present invention includes (1) a colloidal gold-labeled antibody in which colloidal gold is bound to a monoclonal antibody against a denatured and native allergen, and a monoclonal antibody against a denatured and native allergen that recognizes an epitope different from the colloidal gold labeled antibody.
  • the fetal bovine serum (FBS) is developed using a developing solution containing measurement samples of denatured and undenatured allergens extracted using a developing support. ) Is used in an immunochromatographic method characterized by using a developing solution containing at least 10% by weight.
  • An allergen detection method (2) an allergen detection method by immunochromatography according to (1), wherein a developing solution containing at least 30% by weight of fetal bovine serum (FBS) is used, and (3 (2) an allergen detection method by immunochromatography as described in (2) above, wherein a developing solution containing at least 50% by weight of fetal bovine serum (FBS), or (4) against denatured and undenatured allergens
  • Monoclonal antibody has molecular weight of ⁇ s1 casein as a major component of milk allergen, ⁇ -lactoglobulin as a major component of whey allergen, ovalbumin and ovomucoid as an egg white allergen, gliadin as a major component of wheat allergen, buckwheat major protein 24 kDa and 76 kDa proteins, mainly peanuts
  • the present invention also provides (7) a colloidal gold-labeled antibody carrier comprising a colloidal gold-conjugated antibody in which a colloidal gold antibody is bound to a monoclonal antibody against a denatured and undenatured allergen, and a denaturation that recognizes an epitope different from the colloidal gold-labeled antibody.
  • an anionic surfactant for extracting the modified and native allergen from a test sample such as food containing the allergen, From a test sample such as a thiosulfate or a buffer solution containing an anionic surfactant and a nonionic surfactant and a food containing an allergen, an anionic surfactant and a thiosulfate, or
  • An immunochromatographic allergen detection kit comprising a sample carrier that can be obtained, and fetal bovine serum (FBS) or a developing solution containing fetal bovine serum (FBS), and (8) against denatured and undenatured allergens
  • Monoclonal antibody has molecular weight of ⁇ s1 casein as a major component of milk allergen, ⁇ -lactoglobulin as a major component of whey allergen, ovalbumin and
  • an allergen by the immunochromatography method of the present invention even when an anionic surfactant and thiosulfate, or an anionic surfactant and a nonionic surfactant are used, gold bound to the antibody is used. Non-specific reactions associated with colloid breakdown can be suppressed, and various allergens can be detected quickly and accurately.
  • the method for detecting an allergen by the immunochromatography method of the present invention includes a colloidal gold-labeled antibody in which a colloidal gold antibody is bound to a monoclonal antibody against a denatured and undenatured allergen, and a denatured and undenatured antibody that recognizes a different epitope from the gold colloid-labeled antibody.
  • a developing solution containing at least 10% by weight of fetal bovine serum (FBS) The method is not particularly limited, but a developing solution containing 20 to 100% by weight of fetal bovine serum (FBS) is preferably used, and a developing solution containing 30 to 100% by weight is more preferable. It is particularly preferable to use a developing solution containing 40 to 100% by weight, and it is even more preferable to use a developing solution containing 50 to 100% by weight.
  • the immunochromatographic allergen detection kit of the present invention includes a colloidal gold-labeled antibody carrying a colloidal gold antibody bound to a monoclonal antibody against denatured and undenatured allergens, an epitope different from the colloidal gold-labeled antibody.
  • the fetal bovine serum (FBS) concentration in the developing solution is less than 10% by weight, a nonspecific reaction tends to occur, which is not preferable.
  • various additives such as other surfactants, preservatives, and inorganic salts are suspended, emulsified or dissolved in the buffer solution as necessary.
  • the pH of the buffer is preferably 4 to 10, and particularly preferably 6 to 8.
  • a phosphate buffer (PBS) or a Tris buffer can be suitably exemplified.
  • a method for producing a colloidal gold-labeled antibody in which colloidal gold is bound to the above monoclonal antibody is not particularly limited, including a conventionally known method.
  • a 2 mM boronic acid solution is added to a colloidal gold solution prepared to pH 9.0 with 0.2 M potassium carbonate solution.
  • An example is a method in which a solution in which a monoclonal antibody is dissolved in an acid buffer (pH 9.0) is added and reacted at room temperature for 30 minutes, and then a 10% BSA solution is added, further reacted for 15 minutes, and centrifuged.
  • the colloidal gold-labeled antibody carrier can be produced by applying the colloidal gold-labeled antibody produced above onto, for example, a glass wool conjugate pad and drying it.
  • the development support is subjected to a blocking treatment after a buffer solution containing a monoclonal antibody against a modified and unmodified allergen that recognizes an epitope different from that of a colloidal gold-labeled antibody, for example, is linearly applied to a nitrocellulose membrane and dried. Can be produced.
  • anionic surfactants in the buffer used when preparing a measurement sample by extracting denatured and undenatured allergens higher alcohol sulfate, alkyl naphthalene sulfonate, alkyl benzene sulfonate, alkyl A phosphoric acid ester salt etc. can be mentioned, Specifically, sodium dodecyl sulfate (SDS) can be illustrated suitably.
  • SDS sodium dodecyl sulfate
  • the thiosulfate include sodium thiosulfate, potassium thiosulfate, and ammonium thiosulfate.
  • sodium thiosulfate can be preferably exemplified.
  • Nonionic surfactants include polyoxyethylene alkyl ether, polyoxyethylene alkyl phenyl ether, polyoxyethylene fatty acid ester, polyglycerin fatty acid ester, polyoxyethylene fatty acid amide, polyoxyethylene alkylamine, sorbitan fatty acid ester, etc.
  • polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate (Tween 20) can be preferably exemplified.
  • the concentration of the anionic surfactant is 0.1 to 2.0%, preferably 0.25% to 0.5%, and the concentration of thiosulfate is 0.1 to 5.0%, preferably 0.1% to 1.0%, and the concentration of the nonionic surfactant is 0.01 to 1.0%, preferably 0.05 to 0.2%. It is preferable to use a buffer solution containing an ionic surfactant and thiosulfate, or an anionic surfactant and a nonionic surfactant, because extraction efficiency is high and nonspecific reaction can be suppressed.
  • sample carrier capable of supporting the measurement sample
  • a sample pad made of glass wool can be exemplified.
  • the sample carrier, the colloidal gold-labeled antibody support, the development support, and preferably the other end of the development support are connected to the other end of the development support, such as an absorbent pad, for immunochromatography. It can be a test piece.
  • the allergen in the measurement sample moves due to capillary action or the like and binds to the colloidal gold labeled antibody, and this antigen-antibody complex is
  • the antigen-antibody complex is captured at a predetermined position where a monoclonal antibody against a modified and native allergen that recognizes an epitope different from the colloidal gold-labeled antibody is still moved by capillary action or the like on the development support, Allergens can be detected by the presence or absence of a colored line appearing at a predetermined position.
  • Monoclonal antibodies against the above-mentioned modified and native allergens include ⁇ s1 casein as a major component of milk allergen, ⁇ -lactoglobulin as a major component of whey allergen, ovalbumin and ovomucoid as an egg white allergen, as a major component of wheat allergen
  • Two types of monoclonal antibodies specifically recognizing denatured and native allergens selected from gliadin, proteins of buckwheat major proteins of 24 kDa and 76 kDa, and arachi, a major protein of peanuts can be preferably exemplified. .
  • anti- ⁇ s1 casein monoclonal antibody Pas1CN1 produced by hybridoma (FERM-BP-10263) and hybridoma (FERM-BP-10264) are produced as anti- ⁇ s1 casein monoclonal antibodies prepared by the present inventors.
  • Examples of the anti- ⁇ s1 casein monoclonal antibody PasCN2 can be mentioned.
  • Examples of the anti- ⁇ -lactoglobulin monoclonal antibody include an anti- ⁇ -lactoglobulin monoclonal antibody P ⁇ LG3 produced by a hybridoma (FERM-ABP-11237) and a hybridoma (FERM-ABP-11238).
  • Anti- ⁇ -lactoglobulin monoclonal antibody P ⁇ LG4 produced by The hybridoma (FERM-BP-10263) and the hybridoma (FERM-BP-10264) were incorporated on February 24, 2005 by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST) Tsukuba City East 1-1 1)
  • the hybridoma (FERM-ABP-11237) and hybridoma (FERM-ABP-11238) were commissioned on February 22, 2010 by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST). Address: Tsukuba, Ibaraki Prefecture 1-1-1 Higashi Tsukuba Center Central 6)
  • anti-ovalbumin monoclonal antibody PDOA3 produced by a hybridoma (FERM-ABP-11235) and anti-ovalbumin monoclonal antibody PDOA4 produced by a hybridoma (FERM-ABP-11236) can be exemplified.
  • Anti-ovomucoid monoclonal antibody PNOM1 produced by hybridoma (FERM-BP-10279), anti-ovomucoid monoclonal antibody PNOM2 produced by hybridoma (FERM-BP-10280), and anti-ovomucoid monoclonal produced by hybridoma (FERM-BP-10277)
  • Antibody PDOM1 and anti-ovomucoid monoclonal antibody PDOM produced by hybridoma (FERM-BP-10278) It can be mentioned.
  • Hybridoma (FERM-ABP-11235) and Hybridoma (FERM-ABP-11236) were incorporated on February 22, 2010 by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST) Tsukuba City East 1-1 1)
  • the hybridoma (FERM-BP-10279), hybridoma (FERM-BP-10280), hybridoma (FERM-BP-10277), and hybridoma (FERM-BP-10278) It was entrusted to the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Patent Biological Deposit Center (address: Tsukuba City Center 1-1-1 Tsukuba Center Central 6th) on February 24, 1992.
  • anti-wheat gliadin monoclonal antibody examples include an anti-wheat gliadin monoclonal antibody PGL1 produced by a hybridoma (FERM-BP-10267) and an anti-wheat gliadin monoclonal antibody PGL2 produced by a hybridoma (FERM-BP-10268).
  • Hybridoma (FERM-BP-10267) and Hybridoma (FERM-BP-10268) were incorporated on February 24, 2005 at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST) Tsukuba City East 1-1 It is entrusted to 1 Tsukuba Center Central 6).
  • anti-soba protein monoclonal antibody examples include an anti-24 kDa protein monoclonal antibody PBW5 produced by a hybridoma (FERM-ABP-11241) and an anti-76 kDa protein monoclonal antibody PBW2 produced by a hybridoma (FERM-BP-10273). .
  • Hybridoma (FERM-ABP-11241) was received on February 22, 2010 by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Patent Biological Depositary (Address: 1-1-1 Tsukuba Center, Tsukuba City, Ibaraki) , Hybridoma (FERM-BP-10273) was commissioned on February 24, 2005 to the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Deposit Center (address: 1-1-1 Tsukuba Center, Tsukuba City, Ibaraki) Has been. *
  • anti-peanut Ara h1 protein monoclonal antibody anti-native Ara11 monoclonal antibody PAh1-5 produced by hybridoma (FERM-ABP-11240) and anti-native Ara h1 protein monoclonal produced by hybridoma (FERM-ABP-11239)
  • the antibody PAh1-4 can be mentioned.
  • Hybridoma (FERM-ABP-11240) and Hybridoma (FERM-ABP-11239) were incorporated on February 22, 2010 by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (AIST) Tsukuba City East 1-1 1st Tsukuba Center Center 6)
  • Model meat product A meat product was selected as a model food for the quantitative test, and a model meat product containing egg protein at each concentration was prepared according to the formulation shown in Table 1.
  • the red pork used was prepared by removing fats and streaks from pork loin and grinding it to 5 mm. Additives were weighed according to each formulation, mixed in a food processor, and filled into a PVC tube.
  • Heating temperature / time Heating was performed by heating at 75 ° C. for 30 minutes. After heating, the sample made uniform by a food processor was used as a sample for detection.
  • Tween 20 is not present in the extraction with the immunochromatography kit.
  • the measurement sample [3] is for examining whether Tween 20 contributes to extraction efficiency because SDS and Tween 20 coexist and are extracted. 4) Confirmation of detection by immunochromatography 20 ⁇ l of the prepared gold colloid-labeled antibody, 30 ⁇ l of fetal bovine serum (FBS) as a developing solution, 50 ⁇ l of measurement sample [1], measurement sample [2] and measurement sample [3] are added, The test was performed on an immunochromatographic strip and the detection was confirmed.
  • FBS fetal bovine serum
  • the model meat product heated at 75 ° C. for 30 minutes was judged as + up to 2 ppm in all measurement samples, and there was no non-specific reaction at 0 ppm.
  • the model meat product heated at 121 ° C. for 20 minutes was determined to be + w up to 2 ppm in the measurement sample [3], and egg protein could be detected up to 2 ppm. There was no non-specific reaction at 0 ppm. From this, in the case of the extraction method combining an anionic surfactant and a nonionic surfactant, the extraction efficiency is high, and there is no non-specific reaction by using FBS in the developing solution, and An accurate immunochromatography kit can be constructed.
  • Table 6 shows the detection results. Judgment was expressed in the order of +, + w, +-in order from the strongest line, and negative was set as-.
  • the measurement sample [3] was determined to be + w up to 2 ppm, and milk protein could be detected up to 2 ppm. There was no non-specific reaction at 0 ppm. Therefore, the extraction efficiency is the highest in the case of the extraction method combining an anionic surfactant and a nonionic surfactant as in the measurement sample [3], and FBS is used as a developing solution. It was possible to construct an immunochromatography kit quickly and accurately without any non-specific reaction.
  • Table 9 shows the detection results. Judgment was expressed in the order of +, + w, +-in order from the strongest line, and negative was set as-.
  • a glass wool sample pad for the test solution spot and a glass wool absorption pad for absorbing the test solution are prepared separately.
  • the absorbent pads were pasted in this order to form an immunochromatographic strip.
  • Wheat protein was prepared from commercially available wheat powder according to the method of Hatakeyama et al.
  • the sample for detection was a model meat product having the composition shown in Table 12, and the heating temperature / time and sample pretreatment were performed under the same conditions as described above.
  • the sodium thiosulfate concentration was detected up to 2 ppm from 0% to 10.0%, and was judged to be + from 0% to 5.0%, but in particular from 0.1% to 2.0% Up to the highest visibility. There was no non-specific reaction at 0 ppm. From this, in the case of the extraction method combining an anionic surfactant and thiosulfate, the extraction efficiency is high, and there is no non-specific reaction by using FBS in the developing solution, and it is quick and accurate. It became possible to construct an immunochromatography kit.
  • Table 17 shows the detection results. Judgment was expressed in the order of +, + w, +-in order from the strongest line, and negative was set as-.
  • the model meat product heated at 75 ° C. for 30 minutes was judged as + ⁇ up to 2 ppm in the measurement sample [3], and there was no non-specific reaction at 0 ppm.
  • the measured sample [3] was determined to be + w up to 2 ppm, and the buckwheat protein could be detected up to 2 ppm. There was no non-specific reaction at 0 ppm. From this, the extraction method combining an anionic surfactant and a nonionic surfactant has high extraction efficiency, and by using FBS as a developing solution, there is no non-specific reaction and it can be performed quickly.
  • an immunochromatography kit with high accuracy can be constructed.
  • allergen detection kit for immunochromatography.

Abstract

各アレルゲンを含む食品等の被検試料から、各アレルゲンを効率よく抽出し、還元剤を使用しないことで抗体に結合した金コロイドの崩壊にともなう非特異反応を無くすことにより、迅速かつ精度よくアレルゲンを検出するものである。変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体と、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識するモノクロナール抗体が固定された展開支持体と、被検試料から、ＳＤＳ等の陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、ＳＤＳ等の陰イオン性界面活性剤とＴｗｅｅｎ２０等の非イオン性界面活性剤を用いて抽出したアレルゲンの測定サンプルと、展開液とを用い、展開液を展開支持体に展開させた後、金コロイドの集積の有無により、アレルゲンを検出するイムノクロマト法において、ＦＢＳが少なくとも１０％含まれている展開液を用いる。

Description

イムノクロマト法によるアレルゲン検出方法
　本発明は、各種アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を用いて、各アレルゲンを抽出し、各アレルゲンが変性／未変性のいかなる状態にあっても陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で効率よく抽出し、さらに抗体に結合した金コロイドの崩壊に伴う非特異反応を抑え、迅速に検出することのできるイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法やそれに使用することができるイムノクロマト用アレルゲンの検出キットに関する。
　自然環境の減少、車や工場などからの排気ガス、住宅事情等、或いは食べ物の変化など様々な因子により、現在では、３人に１人が何らかのアレルギー疾患をもつといわれている。特に、食物アレルギーは、食品中に含まれるアレルギー誘発物質（以下、食物アレルゲンという）の摂取が引き起こす有害な免疫反応であり、皮膚炎、喘息、消化管障害、アナフィラキシーショック等を引き起こし、このような食物アレルギーの患者が増加していることから、医学上及び食品産業上、深刻な問題を生じている。これらの危害は死に至らせることがあり、未然に処置を施す必要がある。そのためには、表示を通じて消費者へ情報提供の必要性も高まっており、ＦＡＯ／ＷＨＯ合同食品規格委員会は、アレルギー物質として知られている８種の原材料を含む食品にあっては、それを含む旨の表示について合意し、加盟国で各国の制度に適した表示方法を検討することとした（１９９９年６月）。日本では過去の健康危害などの程度、頻度を考慮して重篤なアレルギー症状を起した実績のある２４品目の食品について、その表示方法が定められた（２００２年４月より施行）。アレルギーを引き起こす食品としては、卵類、牛乳類、肉類、魚類、甲殻類及び軟体動物類、穀類、豆類及びナッツ類、果実類、野菜類、ビール酵母若しくはゼラチンなどが知られている。
　上記のアレルゲンを迅速で簡易に検出するため、抗原－抗体による特異的反応を利用して特定の抗原または抗体よりなる被検出物質を検出する免疫測定法としては、試料中の被検出物質を、微粒子に感作させた抗体または抗原と免疫反応により結合させ、結合によって生じる微粒子の凝集状態を測定する凝集法が簡便な免疫測定法であり、特に目視判定が可能である点で一般的に用いられている方法である。
　また、試料中の被検出物質に、放射性同位元素、酵素または蛍光物質からなる標識物質により標識した抗体または抗原を免疫反応により結合させ、この結合した標識物質を測定する放射免疫測定法、酵素免疫測定法あるいは蛍光免疫測定法も採用されている。これらの免疫測定法では、競合型反応、サンドイッチ型反応が広く使われている。これらのうち、いわゆるサンドイッチ型反応の測定法として、イムノクロマトグラフィー法が知られており（例えば、特許文献１参照）、抗原抗体反応に起因する高い特異性に加え、簡易、迅速を特徴とする種々のアレルゲン検出キットが販売されている。
　かかるイムノクロマトグラフィー法に適用される試料としては、生体試料や食品からの抽出物などあるが、試料の種類によっては、検体が存在しないにもかかわらず捕捉部位で淡い呈色を示す所謂非特異反応を生じることがあり、検査における確度の低下をもたらすことがあった。そこで、緩衝液中に、ホスホリルコリン基を有する重合体を、０.００５～０.３ｗ／ｖ％の濃度で含有し、該重合体の数平均分子量は４０，０００以上であることを特徴とする、測定時の非特異的凝集および非特異反応を防止し、以って、高い確度で測定を可能とする展開溶媒（例えば、特許文献２参照）が提案されている。
　また、上記免疫測定法においては、タンパク質に加熱や加圧などによって変性等が生じた場合、測定結果が低くなったり、測定できないケースが認められていた。特定原材料の検査方法として厚生労働省より通知されている食安発第０１２２００１号に収載されているサンドイッチＥＬＩＳＡ法では、加熱した被検試料から各アレルゲンを十分に抽出するために、変性剤及び還元剤（２－メルカプトエタノール）を用いた抽出溶液を用いて抽出する方法が採用されている。これは、従来より利用されてきた、タンパク質の分析に用いられるＳＤＳ－ポリアクリルアミド電気泳動法のサンプル調製方法が応用されており、被検試料から各アレルゲンの抽出効率を高めるには変性剤と還元剤が必要不可欠であると考えられていた。また、これらをイムノクロマトグラフィー法に適応した場合、多くの非特異反応が見られるために正確な検査ができず、変性タンパク質を測定する際に問題となっていた。
　本出願人は、変性剤及び還元剤を用いた抽出溶液を用いて抽出し、イムノクロマトグラフィー法に適応した場合でも、金コロイドの崩壊に伴う非特異反応を抑え迅速かつ精度よくアレルゲンを検出することのできるイムノクロマト法を提案している（例えば、特許文献３参照）。当該方法では、加熱した被検試料から各アレルゲンを十分に抽出し、さらに簡便なイムノクロマトグラフィー法により検査が可能となったため、精度と簡便さについて飛躍的に向上することができた。しかし、用いる還元剤（２－メルカプトエタノール）においては特異な臭いがあることと、２－メルカプトエタノールが２００８年７月１日より毒物として指定されたことから、食品製造工場などでの簡便な使用が困難となっていた。そこで、より安全で効率の良い抽出方法と、これらをイムノクロマトグラフィー法に適応した場合、非特異反応が見られず、正確な検査が可能なイムノクロマトグラフィー法が求められていた。
特開平５－０１０９５０号公報 特開２００３－３４４４０６号公報 特開２００７－２７８７７３号公報
　本発明の課題は、各アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて、各アレルゲンを抽出し、各アレルゲンが変性／未変性のいかなる状態にあっても陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で効率よく抽出し、さらに、抗体に結合した金コロイドの崩壊に伴う非特異反応を抑え、迅速かつ精度よくアレルゲンを検出することのできるイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法やそれに用いることができるイムノクロマト用アレルゲンの検出キットを提供することにある。
　本発明者らは、加熱した被検試料から各アレルゲンを十分に抽出するために必要不可欠と考えられていた２－メルカプトエタノールを使用することなく、各アレルゲンが変性／未変性のいかなる状態にあっても陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で効率よく抽出できること、さらに、簡易に検出することのできるイムノクロマト法において、ウシ胎児血清（ＦＢＳ：fetal bovine serum）を含む展開液を用いると、前記課題を解決できることを見い出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち本発明は、（１）変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体と、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が所定の位置に固定された展開支持体と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて抽出した変性及び未変性のアレルゲンの測定サンプルを含む展開液を用い、展開支持体に展開させた後、金コロイドの集積の有無により、アレルゲンを検出するイムノクロマト法において、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも１０重量％含まれている展開液を用いることを特徴とするイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法や、（２）ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも３０重量％含まれている展開液を用いることを特徴とする前記（１）記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法や、（３）ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも５０重量％含まれている展開液を用いることを特徴とする前記（２）記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法や、（４）変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が、乳アレルゲンの主要成分としてのαｓ１カゼイン、ホエーアレルゲンの主要成分であるβラクトグロブリン、卵白アレルゲンとしてのオボアルブミンとオボムコイド、小麦アレルゲンの主要成分としてのグリアジン、そばの主要タンパク質である分子量２４ｋＤａと７６ｋＤａのタンパク質、落花生の主要タンパク質であるＡｒａｈ１から選ばれる変性及び未変性のアレルゲンを特異的に認識する２種類のモノクローナル抗体であることを特徴とする前記（１）～（３）のいずれか記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法や、（５）陰イオン性界面活性剤としてドデシル硫酸ナトリウムを用いることを特徴とする前記（１）～（４）のいずれか記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出法や、（６）非イオン性界面活性剤としてＴｗｅｅｎ２０を用いることを特徴とする前記（１）～（５）のいずれか記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出法に関する。
　また本発明は、（７）変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体を担持させた金コロイド標識抗体担持体、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が所定の位置に固定された展開支持体と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、変性及び未変性のアレルゲンを抽出するための陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を含有する緩衝液と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて抽出した変性及び未変性のアレルゲンの測定サンプルを担持させることができるサンプル用担体と、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）又はウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含む展開液とを備えたことを特徴とするイムノクロマト用アレルゲンの検出キットや、（８）変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が、乳アレルゲンの主要成分としてのαｓ１カゼイン、ホエーアレルゲンの主要成分であるβラクトグロブリン、卵白アレルゲンとしてのオボアルブミンとオボムコイド、小麦アレルゲンの主要成分としてのグリアジン、そばの主要タンパク質である分子量２４ｋＤａと７６ｋＤａのタンパク質、落花生の主要タンパク質であるＡｒａｈ１から選ばれる変性及び未変性のアレルゲンを特異的に認識する２種類のモノクローナル抗体であることを特徴とする前記（７）記載のイムノクロマト用アレルゲンの検出キットや、（９）陰イオン性界面活性剤としてドデシル硫酸ナトリウムを含有することを特徴とする前記（７）又は（８）記載のイムノクロマト用アレルゲンの検出キットに関する。
　本発明のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法によると、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いた場合でも、抗体に結合した金コロイドの崩壊に伴う非特異反応を抑え、迅速かつ精度よく各種アレルゲンを検出することができる。
　本発明のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法としては、変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体と、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が所定の位置に固定された展開支持体と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて抽出した変性及び未変性のアレルゲンの測定サンプルを含む展開液を用い、展開支持体に展開させた後、金コロイドの集積の有無により、アレルゲンを検出するイムノクロマト法において、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも１０重量％含まれている展開液を用いる方法であれば特に制限されないが、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が、２０～１００重量％含まれている展開液を用いることが好ましく、３０～１００重量％含まれている展開液を用いることがより好ましく、４０～１００重量％含まれている展開液を用いることが特に好ましく、５０～１００重量％含まれている展開液を用いることがより一層好ましい。
　本発明のイムノクロマト用アレルゲンの検出キットとしては、変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体を担持させた金コロイド標識抗体担持体、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が所定の位置に固定された展開支持体と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、変性及び未変性のアレルゲンを抽出するための陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を含有する緩衝液と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて抽出した変性及び未変性のアレルゲンの測定サンプルを担持させることができるサンプル用担体と、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）又はウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含む展開液とを備えた検出キットであれば特に制限されないが、上記展開液として、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも１０重量％含まれている展開液、好ましくは少なくとも２０重量％含まれている展開液、より好ましくは少なくとも３０重量％含まれている展開液、特に好ましくは少なくとも４０重量％含まれている展開液、より一層好ましくは少なくとも５０重量％、例えば５０～１００重量％含まれている展開液を備えたものが望ましい。
　上記展開液におけるウシ胎児血清（ＦＢＳ）濃度が１０重量％未満の場合、非特異反応を生じやすく好ましくない。また、展開液には、緩衝液中にウシ胎児血清（ＦＢＳ）の他、必要に応じて他の界面活性剤、防腐剤、無機塩などの各種添加剤を懸濁もしくは乳濁または溶解せしめて調製することができる。緩衝液は、そのｐＨが４～１０、特にｐＨ６～８が好ましく、例えば、リン酸緩衝液（ＰＢＳ）やトリス緩衝液などを好適に例示することができる。
　上記モノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体の作製方法は従来公知の方法を含め特に制限されないが、例えば、０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液に、２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）にモノクローナル抗体を溶解した溶液を加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を加え、さらに１５分間反応させ、遠心分離する方法を挙げることができる。また、上記金コロイド標識抗体担持体は、上記作製した金コロイド標識抗体を、例えばガラスウール製コンジュゲートパッドに塗布し、乾燥させることにより作製することができる。
　上記展開支持体は、金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体を含む緩衝液を、例えば、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた後、ブロッキング処理することにより作製することができる。
　変性及び未変性のアレルゲンを抽出して測定サンプルを調製する際に用いられる緩衝液における、陰イオン性界面活性剤としては、高級アルコール硫酸エステル塩、アルキルナフタレンスルホン酸塩、アルキルベンゼンスルホン酸塩、アルキルリン酸エステル塩などを挙げることができ、具体的にはドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を好適に例示することができる。チオ硫酸塩としては、チオ硫酸ナトリウム、チオ硫酸カリウム、チオ硫酸アンモニウムなどを挙げることができ、具体的にはチオ硫酸ナトリウムを好適に例示することができる。非イオン性界面活性剤としては、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、ポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル、ポリオキシエチレン脂肪酸エステル、ポリグリセリン脂肪酸エステル、ポリオキシエチレン脂肪酸アミド、ポリオキシエチレンアルキルアミン、ソルビタン脂肪酸エステルなどを挙げることができ、具体的にはポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウレート（Ｔｗｅｅｎ２０）を好適に例示することができる。上記陰イオン性界面活性剤の濃度は０．１～２．０％、好ましくは０．２５％～０．５％であり、チオ硫酸塩の濃度は０．１～５．０％、好ましくは０．１％～１．０％であり、非イオン性界面活性剤の濃度は０．０１～１．０％、好ましくは０．０５～０．２％であり、これらの濃度範囲の陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を含む緩衝液を用いると、抽出効率が高く且つ非特異反応を抑制しうる点で好ましい。
　上記測定サンプルを担持させることができるサンプル用担体としては、ガラスウール製のサンプルパッドを例示することができる。そして、このサンプル用担体、前記金コロイド標識抗体担持体、前記展開支持体、好ましくはこの展開支持体の他端に展開液の吸収する吸収パッド等の吸収体を順次連結することによりイムノクロマト測定用試験片とすることができる。そして、サンプル用担体に測定サンプルをスポットし、ウシ胎児血清を含む展開液に浸漬すると、測定サンプル中のアレルゲンは毛管現象等により移動し、金コロイド標識抗体と結合し、この抗原抗体複合体は展開支持体上をなおも毛管現象等により移動して、金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が固定された所定位置で抗原抗体複合体が捕捉されて、所定位置に現れる着色ラインの有無により、アレルゲンを検出することができる。
　上記変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体としては、乳アレルゲンの主要成分としてのαｓ１カゼイン、ホエーアレルゲンの主要成分であるβラクトグロブリン、卵白アレルゲンとしてのオボアルブミンとオボムコイド、小麦アレルゲンの主要成分としてのグリアジン、そばの主要タンパク質である分子量２４ｋＤａと７６ｋＤａのタンパク質、落花生の主要タンパク質であるＡｒａｈ１から選ばれる変性及び未変性のアレルゲンを特異的に認識する２種類のモノクローナル抗体を好適に例示することができる。
　より具体的には、本発明者らにより作製された、抗αｓ１カゼインモノクローナル抗体として、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６３）が産生する抗αｓ１カゼインモノクローナル抗体Ｐａｓ１ＣＮ１や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６４）が産生する抗αｓ１カゼインモノクローナル抗体Ｐａｓ１ＣＮ２を挙げることができ、抗βラクトグロブリンモノクローナル抗体として、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３７）が産生する抗βラクトグロブリンモノクローナル抗体ＰβＬＧ３や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３８）が産生する抗βラクトグロブリンモノクローナル抗体ＰβＬＧ４を挙げることができる。ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６３）、及びハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６４）は、２００５年２月２４日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受託され、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３７）及びハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３８）は、２０１０年２月２２日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受領されている。
　また、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３５）が産生する抗オボアルブミンモノクローナル抗体ＰＤＯＡ３や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３６）が産生する抗オボアルブミンモノクローナル抗体ＰＤＯＡ４を挙げることができ、抗オボムコイドモノクローナル抗体として、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７９）が産生する抗オボムコイドモノクローナル抗体ＰＮＯＭ１や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２８０）が産生する抗オボムコイドモノクローナル抗体ＰＮＯＭ２や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７７）が産生する抗オボムコイドモノクローナル抗体ＰＤＯＭ１や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７８）が産生する抗オボムコイドモノクローナル抗体ＰＤＯＭ２を挙げることができる。ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３５）、及びハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３６）は、２０１０年２月２２日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受領され、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７９）、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２８０）、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７７）、及びハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７８）は、２００５年２月２４日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受託されている。
　また、抗小麦グリアジンモノクローナル抗体として、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６７）が産生する抗小麦グリアジンモノクローナル抗体ＰＧＬ１や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６８）が産生する抗小麦グリアジンモノクローナル抗体ＰＧＬ２を挙げることができる。ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６７）、及びハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６８）は、２００５年２月２４日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受託されている。
　また、抗そばタンパク質モノクローナル抗体として、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２４１）が産生する抗２４ｋＤａタンパク質モノクローナル抗体ＰＢＷ５や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７３）が産生する抗７６ｋＤａタンパク質モノクローナル抗体ＰＢＷ２を挙げることができる。ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２４１）は、２０１０年２月２２日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受領され、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７３）は、２００５年２月２４日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受託されている。　
　抗落花生Ａｒａ ｈ１タンパク質モノクローナル抗体として、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２４０）が産生する抗未変性Ａｒａｈ１タンパク質モノクローナル抗体ＰＡｈ１－５や、ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３９）が産生する抗未変性Ａｒａ ｈ１タンパク質モノクローナル抗体ＰＡｈ１－４を挙げることができる。ハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２４０）、及びハイブリドーマ（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３９）は、２０１０年２月２２日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（住所：茨城県つくば市東１－１－１ つくばセンター中央第６）に受領されている。
　以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩で抽出したオボアルブミンの検出］
１．材料及び方法
（１）金コロイド標識抗体の作製
　２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）で１ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＤＯＡ４（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３６）のＭＡｂ溶液を調製した。あらかじめ０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液（シグマ社製）５ｍｌにＭＡｂ溶液を５００μｌ加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を６３５μｌ加え、さらに１５分間反応させた。遠心分離を行い、１％ＢＳＡ溶液でＯＤ５２５＝１．０になるよう調製した。
（２）抗体固定化メンブレンの作製
　ＰＢＳで４ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＤＯＡ３（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３５）のＭＡｂ溶液を調製し、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた。その後、１％スキムミルクを含むＴＢＳで３７℃、１時間ブロッキング後、ＴＢＳで洗浄し乾燥させた。
（３）イムノクロマトストリップの組立
　抗体固定化メンブレンに加えて、被検液スポット用のガラスウール製サンプルパッド、被検液吸収用のガラスウール製吸収パッドを別途用意し、サンプルパッド、抗体固定化メンブレン、吸収パッドの順にそれぞれ貼り付け、イムノクロマトストリップとした。検出用サンプルには、以下のモデル食肉製品を供試した。
１）卵タンパク質の調製
　穐山ら（特定原材料（卵）測定の厚生労働省通知ＥＬＩＳＡ法の複数機関による評価研究．食品衛生学雑誌，44, 2003, 213-219）に従い、市販鶏卵より卵タンパク質を調製した。
２）モデル食肉製品
　定量試験のためのモデル食品として食肉製品を選択し、表１に示す配合にて各濃度の卵タンパク質を含むモデル食肉製品を作製した。豚赤肉は、豚ロース肉より脂、スジを除去し、５ｍｍで挽肉にしたものを使用した。各配合に従い添加物を計量し、フードプロセッサーにて混合後、塩ビチューブに充填を行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
３）加熱温度・時間
　加熱は、７５℃３０分加熱したものを用意した。加熱後、フードプロセッサーにて均一としたものを検出用サンプルとした。
４）サンプルの前処理
　検出用サンプル１ｇを量り取り、それに抽出液として、０．５％ＳＤＳとチオ硫酸ナトリウムが最終濃度で０％～１０．０％含まれるＰＢＳを１９ｍｌ加え撹拌し、沸騰水中で１時間加熱し、冷却遠心後、上清を測定サンプルとした。
（４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプルを５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表２に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　表２に示すようにチオ硫酸ナトリウム濃度が０％～５．０％のとき２ｐｐｍまで検出され、０．１％～２．０％では＋ｗと判定され、最も視認性が良かった。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で抽出したオボアルブミンの検出］
１．材料及び方法
１）以下の「加熱温度・時間」、「サンプルの前処理」及び「イムノクロマトグラフィーによる検出の確認」を除いては、実施例１と同様に行った。
２）加熱温度・時間
　加熱は、７５℃３０分と１２１℃２０分加熱したものを用意した。
３）サンプルの前処理
　加熱後、フードプロセッサーにて均一としたものを検出用サンプルとした。検出用サンプル１ｇを量り取り、それに、０．５％ＳＤＳを含むＰＢＳを１９ｍｌ加え撹拌し、沸騰水中で１時間加熱し、冷却遠心後、上清を測定サンプル〔１〕とした。また、測定サンプル〔１〕に最終濃度が０．２％となるようにＴｗｅｅｎ２０を加えたものを測定サンプル〔２〕とした。さらに、０．５％ＳＤＳ及び０．２％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳを１９ｍｌ加え撹拌し、沸騰水中で１時間加熱し、冷却遠心後、上清を測定サンプル〔３〕とした。上記測定サンプル〔２〕は、ＳＤＳ抽出後にＴｗｅｅｎ２０を加えているため、抽出に関与するのではなく、イムノクロマトキットでサンプルを測定する際に、Ｔｗｅｅｎ２０が存在していることがイムノクトマトキットの感度に関与するかを検討するためのものであり、上記測定サンプル〔３〕は、ＳＤＳとＴｗｅｅｎ２０を共存させ抽出しているため、抽出効率にＴｗｅｅｎ２０が貢献するかを検討するためのものである。
４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプル〔１〕、測定サンプル〔２〕、測定サンプル〔３〕を５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表３及び表４に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　表３に示すように７５℃３０分加熱のモデル食肉製品では全ての測定サンプルで２ｐｐｍまで＋と判定され、０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。一方、表４に示すように、１２１℃２０分加熱のモデル食肉製品では測定サンプル〔３〕で２ｐｐｍまで＋ｗと判定され、卵タンパク質を２ｐｐｍまで検出することができた。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩で抽出したカゼインの検出］
１．材料及び方法
（１）金コロイド標識抗体の作製
　２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）で１ｍｇ／ｍｌとなるようにＰαｓ１ＣＮ２（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６４）のＭＡｂ溶液を調製した。あらかじめ０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液（シグマ社製）５ｍｌにＭＡｂ溶液を５００μｌ加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を６３５μｌを加え、さらに１５分間反応させた。遠心分離を行い、１％ＢＳＡ溶液でＯＤ５２５＝１．０になるよう調製した。
（２）抗体固定化メンブレンの作製
　ＰＢＳで４ｍｇ／ｍｌとなるようにＰαｓ１ＣＮ１（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６３）のＭＡｂ溶液を調製し、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた。その後、０．１％牛皮ゼラチンを含むＴＢＳで３７℃、１時間ブロッキング後、ＴＢＳで洗浄し乾燥させた。
（３）イムノクロマトストリップの組立
　抗体固定化メンブレンに加えて、被検液スポット用のガラスウール製サンプルパッド、被検液吸収用のガラスウール製吸収パッドを別途用意し、サンプルパッド、抗体固定化メンブレン、吸収パッドの順にそれぞれ貼り付け、イムノクロマトストリップとした。乳タンパクは穐山らの方法に従い、ホルスタイン種の新鮮乳より調製した。また、検出用サンプルは表５に示す配合のモデル食肉製品を供試し、加熱温度・時間、サンプルの前処理は実施例１と同様の条件で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
（４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプルを５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表６示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　表６に示すようにチオ硫酸ナトリウム濃度が０％～２．０％のとき２ｐｐｍまで検出され、０．１％～１．０％まで＋ｗと判定され、最も視認性が良かった。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で抽出したカゼインの検出］
１．材料及び方法
１）モデル食肉製品の加熱温度・時間、サンプルの前処理、及びイムノクロマトグラフィーによる検出の確認を実施例２と同様の条件で行った他は、実施例３と同様に行った。
２．結果
　次に検出結果を表７及び表８に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　表７及び表８に示すように測定サンプル〔３〕で２ｐｐｍまで＋ｗと判定され、乳タンパク質を２ｐｐｍまで検出することができた。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、測定サンプル〔３〕のように陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に最も抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩で抽出したホエーの検出］
１．材料及び方法
（１）金コロイド標識抗体の作製
　２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）で１ｍｇ／ｍｌとなるようにＰβＬＧ４（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３８）のＭＡｂ溶液を調製した。あらかじめ０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液（シグマ社製）５ｍｌにＭＡｂ溶液を５００μｌ加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を６３５μｌを加え、さらに１５分間反応させた。遠心分離を行い、１％ＢＳＡ溶液でＯＤ５２５＝１．０になるよう調製した。
（２）抗体固定化メンブレンの作製
　ＰＢＳで４ｍｇ／ｍｌとなるようにＰβＬＧ３（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３７）のＭＡｂ溶液を調製し、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた。その後、０．１％牛皮ゼラチンを含むＴＢＳで３７℃、１時間ブロッキング後、ＴＢＳで洗浄し乾燥させた。
（３）イムノクロマトストリップの組立
　抗体固定化メンブレンに加えて、被検液スポット用のガラスウール製サンプルパッド、被検液吸収用のガラスウール製吸収パッドを別途用意し、サンプルパッド、抗体固定化メンブレン、吸収パッドの順にそれぞれ貼り付け、イムノクロマトストリップとした。乳タンパクは穐山らの方法に従い、ホルスタイン種の新鮮乳より調製した。また、検出用サンプルは表３に示す配合のモデル食肉製品を供試し、加熱温度・時間、サンプルの前処理は前記同様の条件で行った。
（４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプルを５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表９に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　表９に示すようにチオ硫酸ナトリウム濃度が０％～１．０％のとき２ｐｐｍまで検出され、０．１％のとき最も視認性が良かった。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で抽出したホエーの検出］
１．材料及び方法
１）モデル食肉製品の加熱温度・時間、サンプルの前処理、及びイムノクロマトグラフィーによる検出の確認を実施例２と同様の条件で行った他は、実施例５と同様に行った。
２．結果
　次に検出結果を表１０及び表１１に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　表１０に示すように、全ての測定サンプルで２ｐｐｍまで＋ｗと判定され、乳タンパク質を２ｐｐｍまで検出することができた。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。表１１に示すように、全ての測定サンプルで１０ｐｐｍまで＋と検出することができたが、測定サンプル〔３〕のように陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に最も視認性が良かったため、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで、非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩で抽出した小麦タンパク質の検出］
１．材料及び方法
（１）金コロイド標識抗体の作製
　２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）で１ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＧＬ２（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６８）のＭＡｂ溶液を調製した。あらかじめ０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液（シグマ社製）５ｍｌにＭＡｂ溶液を５００μｌ加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を６３５μｌを加え、さらに１５分間反応させた。遠心分離を行い、１％ＢＳＡ溶液でＯＤ５２５＝１．０になるよう調製した。
（２）抗体固定化メンブレンの作製
　ＰＢＳで４ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＧＬ１（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２６７）のＭＡｂ溶液を調製し、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた。その後、１．０％牛皮ゼラチンを含むＴＢＳで３７℃、１時間ブロッキング後、ＴＢＳで洗浄し乾燥させた。
（３）イムノクロマトストリップの組立
　抗体固定化メンブレンに加えて、被検液スポット用のガラスウール製サンプルパッド、被検液吸収用のガラスウール製吸収パッドを別途用意し、サンプルパッド、抗体固定化メンブレン、吸収パッドの順にそれぞれ貼り付け、イムノクロマトストリップとした。小麦タンパク質は、穐山らの方法に従い、市販小麦粉末より調製した。また、検出用サンプルは、表１２に示す配合のモデル食肉製品を供試し、加熱温度・時間、サンプルの前処理は前記同様の条件で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
（４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプルを５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表１３に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　表１３に示すようにチオ硫酸ナトリウム濃度が０％～１０．０％まで２ｐｐｍまで検出され、０％～５．０％までは＋と判定されたが、特に０．１％～２．０％までが最も視認性が良かった。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で抽出した小麦タンパク質の検出］
１．材料及び方法
１）モデル食肉製品の加熱温度・時間、サンプルの前処理、及びイムノクロマトグラフィーによる検出の確認を実施例２と同様の条件で行った他は、実施例７と同様に行った。
２．結果
　次に検出結果を表１４及び表１５に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　表１４及び表１５に示すように全ての測定サンプルで２ｐｐｍまで＋と判定され、小麦タンパク質を２ｐｐｍまで検出することができた。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。また、測定サンプル〔３〕のように陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に最も視認性が良かったため、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで、非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩で抽出したそばタンパク質の検出］
１．材料及び方法
（１）金コロイド標識抗体の作製
　２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）で１ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＢＷ２（ＦＥＲＭ－ＢＰ－１０２７３）のＭＡｂ溶液を調製した。あらかじめ０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液（シグマ社製）５ｍｌにＭＡｂ溶液を５００μｌ加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を６３５μｌ加え、さらに１５分間反応させた。遠心分離を行い、１％ＢＳＡ溶液でＯＤ５２５＝１．０になるよう調製した。
（２）抗体固定化メンブレンの作製
　ＰＢＳで４ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＢＷ５（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２４１）のＭＡｂ溶液を調製し、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた。その後、１％スキムミルクを含むＴＢＳで３７℃、１時間ブロッキング後、ＴＢＳで洗浄し乾燥させた。
（３）イムノクロマトストリップの組立
　抗体固定化メンブレンに加えて、被検液スポット用のガラスウール製サンプルパッド、被検液吸収用のガラスウール製吸収パッドを別途用意し、サンプルパッド、抗体固定化メンブレン、吸収パッドの順にそれぞれ貼り付け、イムノクロマトストリップとした。そばタンパク質は、穐山らの方法に従い、市販そば粉末より調製した。また、検出用サンプルは、表１６に示す配合のモデル食肉製品を供試し、加熱温度・時間、サンプルの前処理は前記同様の条件で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
（４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプルを５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表１７に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
　表１７に示すようにチオ硫酸ナトリウム濃度が０．１％～５．０％のとき２ｐｐｍまで検出され、特に０．５％と５．０％では＋ｗと判定され最も視認性が良かった。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で抽出したそばタンパク質の検出］
１．材料及び方法
１）モデル食肉製品の加熱温度・時間、サンプルの前処理、及びイムノクロマトグラフィーによる検出の確認を実施例２と同様の条件で行った他は、実施例９と同様に行った。
２．結果
　次に検出結果を表１８及び表１９に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
　表１８に示すように７５℃３０分加熱のモデル食肉製品では測定サンプル〔３〕で２ｐｐｍまで＋－と判定され、０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。また、表１９に示すように１２１℃２０分加熱のモデル食肉製品では測定サンプル〔３〕で２ｐｐｍまで＋ｗと判定され、そばタンパク質を２ｐｐｍまで検出することができた。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで、非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩で抽出した落花生タンパク質の検出］
１．材料及び方法
（１）金コロイド標識抗体の作製
　２ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ９．０）で１ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＡｈ１－４（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２３９）のＭＡｂ溶液を調製した。あらかじめ０．２Ｍ炭酸カリウム溶液でｐＨ９．０に調製した金コロイド溶液（シグマ社製）５ｍｌにＭＡｂ溶液を５００μｌ加え、室温で３０分間反応した後、１０％ＢＳＡ溶液を６３５μｌ加え、さらに１５分間反応させた。遠心分離を行い、１％ＢＳＡ溶液でＯＤ５２５＝１．０になるよう調製した。
（２）抗体固定化メンブレンの作製
　ＰＢＳで４ｍｇ／ｍｌとなるようにＰＡｈ１－５（ＦＥＲＭ－ＡＢＰ－１１２４０）のＭＡｂ溶液を調製し、ニトロセルロースメンブレンに直線状に塗布し乾燥させた。その後、１％スキムミルクを含むＴＢＳで３７℃、１時間ブロッキング後、ＴＢＳで洗浄し乾燥させた。
（３）イムノクロマトストリップの組立
　抗体固定化メンブレンに加えて、被検液スポット用のガラスウール製サンプルパッド、被検液吸収用のガラスウール製吸収パッドを別途用意し、サンプルパッド、抗体固定化メンブレン、吸収パッドの順にそれぞれ貼り付け、イムノクロマトストリップとした。そばタンパク質は、穐山らの方法に従い、脱脂落花生より調製した。また、検出用サンプルは、表２０に示す配合のモデル食肉製品を供試し、加熱温度・時間、サンプルの前処理は前記同様の条件で行った。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
（４）イムノクロマトグラフィーによる検出の確認
　調製した金コロイド標識抗体を２０μｌ、展開液として牛胎児血清（ＦＢＳ）を３０μｌ、測定サンプルを５０μｌ加え、イムノクロマトストリップに供試し、検出を確認した。
２．結果
　次に検出結果を表２１に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
　表２１に示すようにチオ硫酸ナトリウム濃度が０．１％～１０．０％のとき２ｐｐｍまで検出され、特に０．１％～２．０％までが＋ｗと判定され最も視認性が良かった。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。このことから、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
［イムノクロマトグラフィーによる陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤で抽出した落花生タンパク質の検出］
１．材料及び方法
１）モデル食肉製品の加熱温度・時間、サンプルの前処理、及びイムノクロマトグラフィーによる検出の確認を実施例２と同様の条件で行った他は、実施例１１と同様に行った。
２．結果
　次に検出結果を表２２及び表２３に示す。判定はラインの強い方から順に＋、＋ｗ、＋－と表記し、陰性を－表記とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000022
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000023
　表２２及び表２３に示すように、全ての測定サンプルで２ｐｐｍまで＋と判定され、落花生タンパク質を２ｐｐｍまで検出することができた。０ｐｐｍでは非特異反応はなかった。なかでも、測定サンプル〔３〕のように陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に最も視認性が良かったため、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を組合わせた抽出方法の場合に抽出効率が高く、また、展開液にＦＢＳを用いることで、非特異反応がなく、迅速に且つ精度の良いイムノクロマトキットを構築することが可能となった。
　乳アレルゲン、卵白アレルゲン、小麦アレルゲン、そばアレルゲン、落花生アレルゲン等の食物アレルゲンを、迅速かつ精度よく検出することのできるイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法やそれに用いることができるイムノクロマト用アレルゲンの検出キットを提供する。

Claims (9)

  1. 変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体と、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が所定の位置に固定された展開支持体と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて抽出した変性及び未変性のアレルゲンの測定サンプルを含む展開液を用い、展開支持体に展開させた後、金コロイドの集積の有無により、アレルゲンを検出するイムノクロマト法において、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも１０重量％含まれている展開液を用いることを特徴とするイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法。
  2. ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも３０重量％含まれている展開液を用いることを特徴とする請求項１記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法。
  3. ウシ胎児血清（ＦＢＳ）が少なくとも５０重量％含まれている展開液を用いることを特徴とする請求項２記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法。
  4. 変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が、乳アレルゲンの主要成分としてのαｓ１カゼイン、ホエーアレルゲンの主要成分であるβラクトグロブリン、卵白アレルゲンとしてのオボアルブミンとオボムコイド、小麦アレルゲンの主要成分としてのグリアジン、そばの主要タンパク質である分子量２４ｋＤａと７６ｋＤａのタンパク質、落花生の主要タンパク質であるＡｒａｈ１から選ばれる変性及び未変性のアレルゲンを特異的に認識する２種類のモノクローナル抗体であることを特徴とする請求項１～３のいずれか記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出方法。
  5. 陰イオン性界面活性剤としてドデシル硫酸ナトリウムを用いることを特徴とする請求項１～４のいずれか記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出法。
  6. 非イオン性界面活性剤としてＴｗｅｅｎ２０を用いることを特徴とする請求項１～５のいずれか記載のイムノクロマト法によるアレルゲンの検出法。
  7. 変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体に金コロイドを結合した金コロイド標識抗体を担持させた金コロイド標識抗体担持体、前記金コロイド標識抗体と異なるエピトープを認識する変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が所定の位置に固定された展開支持体と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、変性及び未変性のアレルゲンを抽出するための陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を含有する緩衝液と、アレルゲンを含む食品等の被検試料から、陰イオン性界面活性剤とチオ硫酸塩、又は、陰イオン性界面活性剤と非イオン性界面活性剤を用いて抽出した変性及び未変性のアレルゲンの測定サンプルを担持させることができるサンプル用担体と、ウシ胎児血清（ＦＢＳ）又はウシ胎児血清（ＦＢＳ）を含む展開液とを備えたことを特徴とするイムノクロマト用アレルゲンの検出キット。
  8. 変性及び未変性のアレルゲンに対するモノクローナル抗体が、乳アレルゲンの主要成分としてのαｓ１カゼイン、ホエーアレルゲンの主要成分であるβラクトグロブリン、卵白アレルゲンとしてのオボアルブミンとオボムコイド、小麦アレルゲンの主要成分としてのグリアジン、そばの主要タンパク質である分子量２４ｋＤａと７６ｋＤａのタンパク質、落花生の主要タンパク質であるＡｒａｈ１から選ばれる変性及び未変性のアレルゲンを特異的に認識する２種類のモノクローナル抗体であることを特徴とする請求項７記載のイムノクロマト用アレルゲンの検出キット。
  9. 陰イオン性界面活性剤としてドデシル硫酸ナトリウムを含有することを特徴とする請求項７又は８記載のイムノクロマト用アレルゲンの検出キット。
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