JPS6181743A - トランスジェニック動物 - Google Patents
トランスジェニック動物Info
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- JPS6181743A JPS6181743A JP60134452A JP13445285A JPS6181743A JP S6181743 A JPS6181743 A JP S6181743A JP 60134452 A JP60134452 A JP 60134452A JP 13445285 A JP13445285 A JP 13445285A JP S6181743 A JPS6181743 A JP S6181743A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、遺伝子転移(transgenic)動物に
関するものである。
関するものである。
遺伝子転移動物は、動物又はこの動物の先祖の胚芽ライ
ン中へ初期(通常、単細胞)発育段階にて導入された遺
伝子を有する。ワグナ−(Wagner−)等(198
1) P、N、A、S、U、S、A、第785巻、第5
016頁及びスチュワー) (Stewart )等(
1982)、サイエンス(5clrnce ) 、第2
17巻、第1046頁は、ヒトグ田ビン遺伝子を含有す
る遺伝子転移ネズミを記載している。フンスタンチ一二
(Conatantini )等(1981)、ネイチ
ャー(Nature )第294巻、第92頁及びレー
ジ(Lacy)等(198!i)、七/L/(Ce1l
)第34巻、第343頁は、ウサギグロビン遺伝子を
含有する遺伝子転移ネズミを記載している。マツフナイ
ト(McKnlght )e (1983)、セル第3
4巻、第335頁は難トランスフェリン遺伝子を含有す
る遺伝子転移ネズミを記載している。プリンスター(B
r1natar )等(1985)、ネイチャー、第3
06巻、第532頁は、機能的に転移された免疫グロブ
リン遺伝子を含有する遺伝子転移ネズミを記載している
。パルミタ−(Palmlter)等(19B2)、ネ
イチャー第300巻、第611頁は、重金属誘発性メタ
ロチオネインプロモータ配列に融合されたラッテ成長ホ
ルモン遺伝子を含有する遺伝子転移ネズミを記載してい
る。パルミター等(1982)、セル第29巻、第70
1頁は、メタ田チオネインプロモータ配列に融合された
チミジンキナーゼ遺伝子を含有する遺伝子転移ネズミを
記載している。バルミタ−44(1985)サイエンス
第222巻、第809頁は、メタワチオネインプ田モー
タ配列に融合されたヒト成長ホルモン遺伝子を含有する
遺伝子転移ネズミを記載している。
ン中へ初期(通常、単細胞)発育段階にて導入された遺
伝子を有する。ワグナ−(Wagner−)等(198
1) P、N、A、S、U、S、A、第785巻、第5
016頁及びスチュワー) (Stewart )等(
1982)、サイエンス(5clrnce ) 、第2
17巻、第1046頁は、ヒトグ田ビン遺伝子を含有す
る遺伝子転移ネズミを記載している。フンスタンチ一二
(Conatantini )等(1981)、ネイチ
ャー(Nature )第294巻、第92頁及びレー
ジ(Lacy)等(198!i)、七/L/(Ce1l
)第34巻、第343頁は、ウサギグロビン遺伝子を
含有する遺伝子転移ネズミを記載している。マツフナイ
ト(McKnlght )e (1983)、セル第3
4巻、第335頁は難トランスフェリン遺伝子を含有す
る遺伝子転移ネズミを記載している。プリンスター(B
r1natar )等(1985)、ネイチャー、第3
06巻、第532頁は、機能的に転移された免疫グロブ
リン遺伝子を含有する遺伝子転移ネズミを記載している
。パルミタ−(Palmlter)等(19B2)、ネ
イチャー第300巻、第611頁は、重金属誘発性メタ
ロチオネインプロモータ配列に融合されたラッテ成長ホ
ルモン遺伝子を含有する遺伝子転移ネズミを記載してい
る。パルミター等(1982)、セル第29巻、第70
1頁は、メタ田チオネインプロモータ配列に融合された
チミジンキナーゼ遺伝子を含有する遺伝子転移ネズミを
記載している。バルミタ−44(1985)サイエンス
第222巻、第809頁は、メタワチオネインプ田モー
タ配列に融合されたヒト成長ホルモン遺伝子を含有する
遺伝子転移ネズミを記載している。
一般に本発明は、胚芽細胞と体細胞とが、動物又はこの
動物の先祖に胚芽段階(好ましくは、単am又は受精卵
細胞の段階かつ一般に約8個の細胞段階以前)で導入さ
れた活性化腫瘍遺伝子配列を有するような、遺伝子転移
の非ヒト成熟核動物(好ましくは、たとえばネズミのよ
うなゲツ債動物)に関するものである。本朗細書に使用
する活性化腫瘍遺伝子配列という用語は、動物のゲノム
中へ組み込まれると動物内に新生物(n@apl口m)
、特に悪性腫瘍の発生の可能性を増大させる腫瘍遺伝子
を意味する。腫s遺伝子を活性化状態において染色体に
組み込むよう動物の胚芽中へ導入しつる幾つかの手段が
存在する。1つの方法は、胚芽へ遺伝子を自然に発生し
た際に感染させ、かつ遺伝子が染色体中へその活性化を
生せしめる位置に一体化されている遺伝子転移動物を選
択することである。他の活性化法は、胚芽中へ導入する
前に腫75遺伝子又はその制御配列を変化させることを
含む。この種の1つの方法は、既に転座した遣腫遺伝子
を含むベクターを用いて胚芽に感染させることである。
動物の先祖に胚芽段階(好ましくは、単am又は受精卵
細胞の段階かつ一般に約8個の細胞段階以前)で導入さ
れた活性化腫瘍遺伝子配列を有するような、遺伝子転移
の非ヒト成熟核動物(好ましくは、たとえばネズミのよ
うなゲツ債動物)に関するものである。本朗細書に使用
する活性化腫瘍遺伝子配列という用語は、動物のゲノム
中へ組み込まれると動物内に新生物(n@apl口m)
、特に悪性腫瘍の発生の可能性を増大させる腫瘍遺伝子
を意味する。腫s遺伝子を活性化状態において染色体に
組み込むよう動物の胚芽中へ導入しつる幾つかの手段が
存在する。1つの方法は、胚芽へ遺伝子を自然に発生し
た際に感染させ、かつ遺伝子が染色体中へその活性化を
生せしめる位置に一体化されている遺伝子転移動物を選
択することである。他の活性化法は、胚芽中へ導入する
前に腫75遺伝子又はその制御配列を変化させることを
含む。この種の1つの方法は、既に転座した遣腫遺伝子
を含むベクターを用いて胚芽に感染させることである。
他の方法は、転写が合成若しくはウィルス性活性化プロ
モータの制御下にあるような腫瘍遺伝子を使用すること
、或いは1つ若しくはそれ以上の塩基対置換、削除又は
付加により活性化された腫瘍遺伝子を使用することであ
る。
モータの制御下にあるような腫瘍遺伝子を使用すること
、或いは1つ若しくはそれ以上の塩基対置換、削除又は
付加により活性化された腫瘍遺伝子を使用することであ
る。
好適具体例において、遺伝子転移動物の染色体は内生コ
ード配列(特に好ましくはc−myc遺伝子、以下my
c遺伝子という)を含み、これは腫瘍遺伝子配列と実質
的に同じであり、腫瘍遺伝子配列の転写は内生コード配
列の転写を制御するプロそ−タ配列とは異なるプ四モー
タ配列の制御下にある。
ード配列(特に好ましくはc−myc遺伝子、以下my
c遺伝子という)を含み、これは腫瘍遺伝子配列と実質
的に同じであり、腫瘍遺伝子配列の転写は内生コード配
列の転写を制御するプロそ−タ配列とは異なるプ四モー
タ配列の制御下にある。
さらに、腫瘍遺伝子配列は、合成プ胃モータ配列の制御
下におくこともできる。好ましくは、腫瘍遺伝子配列の
転写を制御するプ田モータ配列は誘発可能である。
下におくこともできる。好ましくは、腫瘍遺伝子配列の
転写を制御するプ田モータ配列は誘発可能である。
受精卵細胞段階における腫瘍遺伝子配列の導入は、腫瘍
遺伝子配列が遺伝子転移動物の胚芽細胞及び体細胞の全
てに存在するよう確保する。引き続いて、遺伝子転移「
創出」動物の胚芽細胞における腫瘍遺伝子配列の存在は
、創出動物の子孫が全てその胚芽細胞及び体細胞の全て
に活性化腫瘍遺伝子配列を有することを意味する。それ
より後の胚芽段階における腫瘍遺伝子配列の導入は創出
動物の幾つかの体細胞に腫瘍遺伝子の欠如をもたらすが
、遺伝子を受は継いだこの種の動物の子孫はその胚芽細
胞及び体細胞の全てに活性化腫ia伝子を有する。
遺伝子配列が遺伝子転移動物の胚芽細胞及び体細胞の全
てに存在するよう確保する。引き続いて、遺伝子転移「
創出」動物の胚芽細胞における腫瘍遺伝子配列の存在は
、創出動物の子孫が全てその胚芽細胞及び体細胞の全て
に活性化腫瘍遺伝子配列を有することを意味する。それ
より後の胚芽段階における腫瘍遺伝子配列の導入は創出
動物の幾つかの体細胞に腫瘍遺伝子の欠如をもたらすが
、遺伝子を受は継いだこの種の動物の子孫はその胚芽細
胞及び体細胞の全てに活性化腫ia伝子を有する。
腫BM伝子又はその有効配列を使用して、本発明の遺伝
子転移ネズミを産出することができる。
子転移ネズミを産出することができる。
下記第1表は、幾種かの公知のウィルス性及び細胞質の
腫瘍遺伝子を示し、その多くは記載したようにネズミ及
び(又は)ヒトに対し内生的なりNA配列と同族である
。「腫瘍遺伝子」という用語は、ウィルス配列及び同族
の内生配列の両者を包含する0 第1表 本発明の動物を使用して、発癌物質の疑いのある物質に
この動物を露呈しかつ発癌性の表示として新生物の増殖
を決定することにより、発癌性の疑いのある物質を試験
することができる。この試験は、遺伝子転移動物がa瘍
を発生する傾向を有するため極めて鋭敏である。この感
度は、現在、動物の発癌性試験に使用されている量より
もずっと少ない量で疑がわしい物質を試験することを可
能にし、したがって使用した試験材料の量がヒトに対し
て露呈される量を著しく越えるためにその有効性が疑か
わしいという現在の方法における1つの非難の原因を減
らす。さらに、これらの動物は、既に活性化!!瘍遺伝
子を有するので、ずっと早く腫瘍を発生すると思われる
。さらに、これらの動物は試験方式としてバクテリヤ(
たとえば、アメス試験に使用される)よりも好ましい。
腫瘍遺伝子を示し、その多くは記載したようにネズミ及
び(又は)ヒトに対し内生的なりNA配列と同族である
。「腫瘍遺伝子」という用語は、ウィルス配列及び同族
の内生配列の両者を包含する0 第1表 本発明の動物を使用して、発癌物質の疑いのある物質に
この動物を露呈しかつ発癌性の表示として新生物の増殖
を決定することにより、発癌性の疑いのある物質を試験
することができる。この試験は、遺伝子転移動物がa瘍
を発生する傾向を有するため極めて鋭敏である。この感
度は、現在、動物の発癌性試験に使用されている量より
もずっと少ない量で疑がわしい物質を試験することを可
能にし、したがって使用した試験材料の量がヒトに対し
て露呈される量を著しく越えるためにその有効性が疑か
わしいという現在の方法における1つの非難の原因を減
らす。さらに、これらの動物は、既に活性化!!瘍遺伝
子を有するので、ずっと早く腫瘍を発生すると思われる
。さらに、これらの動物は試験方式としてバクテリヤ(
たとえば、アメス試験に使用される)よりも好ましい。
何故なら、これら動物はヒトと同様にを椎動物であり、
かつ変異誌発性でなく発癌性が測定されるからである。
かつ変異誌発性でなく発癌性が測定されるからである。
さらに、本発明の動物を、たとえばβ〜カロチン又はビ
タミンEのような新生物の発生に対し保護を与えると思
われる酸化防止剤などの物質につき試験動物として使用
することができる。動物をこの物質で処理し、そして未
処理動物に比較した新生物発生の発病率低下を保良の表
示として検出する。さらにこの方法は、処理動物と未処
理動物とを保護物質で処理する前、後または同時に発癌
物質に露呈することを含む。
タミンEのような新生物の発生に対し保護を与えると思
われる酸化防止剤などの物質につき試験動物として使用
することができる。動物をこの物質で処理し、そして未
処理動物に比較した新生物発生の発病率低下を保良の表
示として検出する。さらにこの方法は、処理動物と未処
理動物とを保護物質で処理する前、後または同時に発癌
物質に露呈することを含む。
さらに本発明の動物を細胞培養のための細胞源として使
用することもできる。これら動物からの細胞は正常な培
養細胞と形質転換した培養細胞との両者の望ましい性質
を有利に示すことができ、すなわちこれらは形態学的に
も生理学的にも正常又は正常に近いが、たとえばNIH
3T5細胞のような細胞と同様に長期間、恐らく、無期
限にわたり培養することができる。さらに、腫瘍遺伝子
配列の転写を制御するプロモータ配列が誘発可能である
場合、細胞成長速度及びその他の培養特性を誘発因子の
添加若しくは除去によって制御することができる。
用することもできる。これら動物からの細胞は正常な培
養細胞と形質転換した培養細胞との両者の望ましい性質
を有利に示すことができ、すなわちこれらは形態学的に
も生理学的にも正常又は正常に近いが、たとえばNIH
3T5細胞のような細胞と同様に長期間、恐らく、無期
限にわたり培養することができる。さらに、腫瘍遺伝子
配列の転写を制御するプロモータ配列が誘発可能である
場合、細胞成長速度及びその他の培養特性を誘発因子の
添加若しくは除去によって制御することができる。
°本発明の他の特徴及び利点は以下の好適具体例の説明
から明らかとなるであろう。
から明らかとなるであろう。
MMTV−mye融合遺伝子
ネズミのmyeffi伝子とKMTV LTRとを用い
て遺伝子融合体を作成した。my63a伝子は、活性化
しうる腫瘍遺伝子であることが知られている〔たとえば
、レダー(Ledsr )e(1985)、サイエンス
、第222巻、第765頁は、パーキット・リンパ腫(
Burkitt’s Lymphoma )及びネズミ
形質細胞腫を特性化する染色体転座がどのようにしてm
7e遺伝子と免疫グロブリン定常領域の1つとの並列を
もたらすかを説明しており、mye a伝子の増幅も形
質転換細胞ラインにおいて観察されている〕。第1図は
rnye領域が付与されたネズミmyc M伝子のサブ
クローンを示している。
て遺伝子融合体を作成した。my63a伝子は、活性化
しうる腫瘍遺伝子であることが知られている〔たとえば
、レダー(Ledsr )e(1985)、サイエンス
、第222巻、第765頁は、パーキット・リンパ腫(
Burkitt’s Lymphoma )及びネズミ
形質細胞腫を特性化する染色体転座がどのようにしてm
7e遺伝子と免疫グロブリン定常領域の1つとの並列を
もたらすかを説明しており、mye a伝子の増幅も形
質転換細胞ラインにおいて観察されている〕。第1図は
rnye領域が付与されたネズミmyc M伝子のサブ
クローンを示している。
所要のMMTV機能は、p21蛋白質のホルモン誘発性
を示したpA9プラスミド(第2図)により与えられた
。このプラスミドはファング(Huang)等(198
1)、セル第27巻、第245頁に記載されている。p
A9に関するbi M T V機能は糖質フルチフイド
の制御に必要とされる領域、MMTVプロモータ及びキ
ャップ部位を含む。
を示したpA9プラスミド(第2図)により与えられた
。このプラスミドはファング(Huang)等(198
1)、セル第27巻、第245頁に記載されている。p
A9に関するbi M T V機能は糖質フルチフイド
の制御に必要とされる領域、MMTVプロモータ及びキ
ャップ部位を含む。
上記プラスミドを使用して、第3−6図に示した4種の
融合遺伝子構造を作成した。これらの構造は、p21f
r白質コード配列を含むSmm−Ec。
融合遺伝子構造を作成した。これらの構造は、p21f
r白質コード配列を含むSmm−Ec。
R1領域をpA?から削除しかつこれを図面に示した4
種のm7e領域で置換することにより作成した。手順は
、マニアチス(Manlatis)等(19B2)モレ
キュラ・クローニング(Mo1seular Clon
ing)ニラボラトリー・マニュアAt (Labor
atory Manual)(コールド・スプリング・
ハ′−バー・ラバラトリ社)に記載された慣用技術とし
た。第1図に示した制限部位は5tul(St)、Sm
Smm1(S、EcoRI(R)、Hlndn[(H)
、Pvul (P )、BamHI(B)、Xbal
(X )及びC1a I (C)である。構造の下の実
線矢印は、MMTT/ LTRと1n7e遺伝子とに
おけるプロモータを示している。13amHI及びC1
aIでの切断により作成されかつm7eプローブにハイ
ブリッド化する主断片の寸法(Kb )を各構造につき
示す。
種のm7e領域で置換することにより作成した。手順は
、マニアチス(Manlatis)等(19B2)モレ
キュラ・クローニング(Mo1seular Clon
ing)ニラボラトリー・マニュアAt (Labor
atory Manual)(コールド・スプリング・
ハ′−バー・ラバラトリ社)に記載された慣用技術とし
た。第1図に示した制限部位は5tul(St)、Sm
Smm1(S、EcoRI(R)、Hlndn[(H)
、Pvul (P )、BamHI(B)、Xbal
(X )及びC1a I (C)である。構造の下の実
線矢印は、MMTT/ LTRと1n7e遺伝子とに
おけるプロモータを示している。13amHI及びC1
aIでの切断により作成されかつm7eプローブにハイ
ブリッド化する主断片の寸法(Kb )を各構造につき
示す。
MMTV−H!+ mya (第5図)は2つの工程
で作成した:先ず最初に、mye配列の大部分を含有す
る4 7 HbのHlndl[myc断片をクレノーポ
リメラーゼで鈍化させ、かつ同様に処理されたpA9S
mal−EcoRI ベクターに結合させた。この構造
はmye遺伝子の正常な3′末端を欠如している。
で作成した:先ず最初に、mye配列の大部分を含有す
る4 7 HbのHlndl[myc断片をクレノーポ
リメラーゼで鈍化させ、かつ同様に処理されたpA9S
mal−EcoRI ベクターに結合させた。この構造
はmye遺伝子の正常な3′末端を欠如している。
myc遺伝子の3′末端を導入するため、最初のmyc
イントロンの中央から切断MM T V −H3myc
におけるpBR322PvtII部位まで延在するpv
ul−Pvu 1断片を、ネズミm7eサブクローンか
らの関連Pマu1−Pvu1断片で置換した。
イントロンの中央から切断MM T V −H3myc
におけるpBR322PvtII部位まで延在するpv
ul−Pvu 1断片を、ネズミm7eサブクローンか
らの関連Pマu1−Pvu1断片で置換した。
MMTV−Xb a myc 構造(第3図)は、先ず
MM T V −5rna mycプラスミドをSma
l及びXbalで切断して作成した。次いで、Xba
1末端をタレノーポリメラーゼで鈍化させ、そして編状
分子をT 4 DNAリガーゼにより再現化させた。M
MTV−8tu myc (第6図)及びMMT V
−Sma myc (第4図)の構造は、p21蛋白質
コード配列をそれぞれ5tul −Eco RI又はS
mal −Eco RI myc断片で置換して形成さ
せた( EcoRI部位はmycサブクローンのpBR
322配列内に存在する)。第1図に示したように、m
yc M伝子内には1個のみの5tu1部位が存在する
。myeffi伝子内には2個以上のSma 1部位が
存在するので(第4図)、部分的Smal切断を行なっ
て多数のMMTV−Sma m7c プラスミドを発生
させた。第4図に示したプラスミドを、転位を示さずか
つmyc近位制御領域を含むのに充分な長さのmycプ
ロモータの領域5′(約1Kb)を含むものとして選択
した。
MM T V −5rna mycプラスミドをSma
l及びXbalで切断して作成した。次いで、Xba
1末端をタレノーポリメラーゼで鈍化させ、そして編状
分子をT 4 DNAリガーゼにより再現化させた。M
MTV−8tu myc (第6図)及びMMT V
−Sma myc (第4図)の構造は、p21蛋白質
コード配列をそれぞれ5tul −Eco RI又はS
mal −Eco RI myc断片で置換して形成さ
せた( EcoRI部位はmycサブクローンのpBR
322配列内に存在する)。第1図に示したように、m
yc M伝子内には1個のみの5tu1部位が存在する
。myeffi伝子内には2個以上のSma 1部位が
存在するので(第4図)、部分的Smal切断を行なっ
て多数のMMTV−Sma m7c プラスミドを発生
させた。第4図に示したプラスミドを、転位を示さずか
つmyc近位制御領域を含むのに充分な長さのmycプ
ロモータの領域5′(約1Kb)を含むものとして選択
した。
第4図及び第6図の構造は、非活性化myc遺伝子より
天然に先行する2種のプロモータを含んでいる。第5図
の構造は両mycプロモータを喪失しているが、より短
い転写物のキャップ部位を保持している。第6図の構造
は第1 mycエクンンを含まないが、全景白質コード
配列を含んでいる。図示した構造の全てにおけるmyc
配列の3′末端は、myeポリ人付加部位に対し約I
Kb 3 ’のH1ndm部位に位置する。
天然に先行する2種のプロモータを含んでいる。第5図
の構造は両mycプロモータを喪失しているが、より短
い転写物のキャップ部位を保持している。第6図の構造
は第1 mycエクンンを含まないが、全景白質コード
配列を含んでいる。図示した構造の全てにおけるmyc
配列の3′末端は、myeポリ人付加部位に対し約I
Kb 3 ’のH1ndm部位に位置する。
これらの構造を全て多重制御酵素切断によって検査し、
これら構造は検出しうる転位を含まなかった。
これら構造は検出しうる転位を含まなかった。
の産出
上記MM T V −myeプラスミドをSal 1及
びEc。
びEc。
RI (そのそれぞれはpBR522配列の内部で1
回開裂する)によって切断し、受精した単細胞のネズミ
卵の雄前杉へ別々に注入した。この結果、前核1個当り
約5008個の線状化プラスミドのコピーが得られた。
回開裂する)によって切断し、受精した単細胞のネズミ
卵の雄前杉へ別々に注入した。この結果、前核1個当り
約5008個の線状化プラスミドのコピーが得られた。
次いで、注入した卵をワグナー等(1981) 、P、
N、A、S、U、S、A、 第78巻、第5016頁
に記載されたように偽妊娠の養育鹸ネズミに移した。こ
れら卵は、CD−I XC57B1/6Jの交配によっ
て得た。ネズミは、チャールス・リバー・ラボラドリー
ス社から得たもの(CDR−1−HR/I sr (C
D−1)、異系交配白ネズミ)及びジャクソン・ラボラ
ドリース社から得たもの(C57B1/6J )とし、
これらを10時間暗くしかつ14時間照明するサイクル
に維持した環境制御された施設に収容した。養育雌ネズ
ミにおける卵を畔化するまで発育させた。
N、A、S、U、S、A、 第78巻、第5016頁
に記載されたように偽妊娠の養育鹸ネズミに移した。こ
れら卵は、CD−I XC57B1/6Jの交配によっ
て得た。ネズミは、チャールス・リバー・ラボラドリー
ス社から得たもの(CDR−1−HR/I sr (C
D−1)、異系交配白ネズミ)及びジャクソン・ラボラ
ドリース社から得たもの(C57B1/6J )とし、
これらを10時間暗くしかつ14時間照明するサイクル
に維持した環境制御された施設に収容した。養育雌ネズ
ミにおける卵を畔化するまで発育させた。
4週令にて各出産光を、サウザンハイブリッド化におけ
るテールから採取したDNAを用いて、P3”DNAプ
ローブにツク翻訳により標識)により分析した。それぞ
れの場合、テールからのDNAをBamHI及びC1a
1により切断し、かつ正常なm7e遺伝子(第1図)か
らのp32標識されたBamHI/H1ndI[Iプロ
ーブで試験した。
るテールから採取したDNAを用いて、P3”DNAプ
ローブにツク翻訳により標識)により分析した。それぞ
れの場合、テールからのDNAをBamHI及びC1a
1により切断し、かつ正常なm7e遺伝子(第1図)か
らのp32標識されたBamHI/H1ndI[Iプロ
ーブで試験した。
分析用のDNAは、デービス等(1980)、メソツズ
・イン・エンチモロジー(グロスマン等騙)第65巻、
第404頁に記載された方法により、テールのα1〜1
5のセクションから抽出し、ただしエタノール沈澱に先
立ち1回のクロロホルム抽出を行なった。得られた核酸
ペレットを80%エタノール中で1回洗浄し、乾燥しそ
して300pLのt OmM )リス(pH7,4)、
IllmMEDTAに再懸濁させた。
・イン・エンチモロジー(グロスマン等騙)第65巻、
第404頁に記載された方法により、テールのα1〜1
5のセクションから抽出し、ただしエタノール沈澱に先
立ち1回のクロロホルム抽出を行なった。得られた核酸
ペレットを80%エタノール中で1回洗浄し、乾燥しそ
して300pLのt OmM )リス(pH7,4)、
IllmMEDTAに再懸濁させた。
チー/I/DNA調製物10μt(約10μIのDNA
)を完全に切断し、α8%アガロースゲルを通して電
気泳動させ、かつサウザーン(1975)、ジャーナル
・モレキュラー・バイオロジー第98巻、第503頁に
記載されたようにニトロセルロースへ移した。これらの
フィルタを10%デキストラン硫酸塩の存在下でプロー
ブヘー晩ハイブリッド化させ、2XS S C,α1%
SDSにて室温で2回洗浄しかつ(LIXSSC,C1
1%5DSk:て64℃で4回洗浄した。
)を完全に切断し、α8%アガロースゲルを通して電
気泳動させ、かつサウザーン(1975)、ジャーナル
・モレキュラー・バイオロジー第98巻、第503頁に
記載されたようにニトロセルロースへ移した。これらの
フィルタを10%デキストラン硫酸塩の存在下でプロー
ブヘー晩ハイブリッド化させ、2XS S C,α1%
SDSにて室温で2回洗浄しかつ(LIXSSC,C1
1%5DSk:て64℃で4回洗浄した。
このサウザンハイブリッド化は、10匹の創出ネズミが
注入されたMM T V −myc融合体を保持したこ
とを示した。2匹の創出動物はmyC遺伝子を2つの異
なる位置に一体化させて、2種の遺伝学1異なる遺伝子
転移ネズミの系列を生成した。他のネズミは一体化され
たmyea伝子の2種の多形質型を形成し、したがって
2種の遺伝学1異なる子孫を形成し、そのそれぞれは異
なる遺伝子の多形質型を有した。したがって、10匹の
創出動物は13系列の遺伝子転移子孫を与えた。
注入されたMM T V −myc融合体を保持したこ
とを示した。2匹の創出動物はmyC遺伝子を2つの異
なる位置に一体化させて、2種の遺伝学1異なる遺伝子
転移ネズミの系列を生成した。他のネズミは一体化され
たmyea伝子の2種の多形質型を形成し、したがって
2種の遺伝学1異なる子孫を形成し、そのそれぞれは異
なる遺伝子の多形質型を有した。したがって、10匹の
創出動物は13系列の遺伝子転移子孫を与えた。
創出動物を注射してない動物へ交配させ、そして得られ
た13系列の遺伝子転移子孫のDNAを分析した。この
分析は、それぞれの場合、注射した遺伝子が胚芽ライン
を介して転移されたことを示す。13系列のうち11系
列は、さらに少なくとも1つの体組織において新たに獲
得されたMMTV−myc遺伝子を発現し、この発現が
最も優性であった組織は唾液腺であった。
た13系列の遺伝子転移子孫のDNAを分析した。この
分析は、それぞれの場合、注射した遺伝子が胚芽ライン
を介して転移されたことを示す。13系列のうち11系
列は、さらに少なくとも1つの体組織において新たに獲
得されたMMTV−myc遺伝子を発現し、この発現が
最も優性であった組織は唾液腺であった。
組織における新たに獲得した遺伝子の転写を、組織から
RNAを抽出しかつこのRNAを81ヌクレアーズ保護
法にて次のように分析することにより決定した。創出し
た組織を5.Or!Ltの冷ハン緩衝塩水で洗浄し、そ
して全RNAをクリブライン等(1979)、バイオケ
ミストリー第18巻、第5294頁の方法によりCsC
l Q度勾配変法を用いて単離した。RNAペレットを
エタノール中で再沈澱させて2回洗浄し、260nmに
おける吸光度により定量化した。適当な単一鎖の均一標
識したDNAプローブを、リー等(1982)、PNA
SSUSA第79巻、第4775頁に記載されたように
作成した。たとえば第6図のMMTV−3Tu mye
融合体の転写につき試験するため、第7図に示したプロ
ーブを使用した。このプローブは、第1 mycエクソ
ンに対するSma1部位5′から第1 myeエクソン
の3′末端におけるS s<1部位まで延在する。内生
myeプ四モータからの転写は、プローブ353及び5
20塩基対長さの断片を保護するRNAを産生じ、MM
TVプロモータからの転写はこのプ四−プを完全に保護
すると共に、次のハイブリッド化工程において942塩
基対長さのバンドとして現われる。
RNAを抽出しかつこのRNAを81ヌクレアーズ保護
法にて次のように分析することにより決定した。創出し
た組織を5.Or!Ltの冷ハン緩衝塩水で洗浄し、そ
して全RNAをクリブライン等(1979)、バイオケ
ミストリー第18巻、第5294頁の方法によりCsC
l Q度勾配変法を用いて単離した。RNAペレットを
エタノール中で再沈澱させて2回洗浄し、260nmに
おける吸光度により定量化した。適当な単一鎖の均一標
識したDNAプローブを、リー等(1982)、PNA
SSUSA第79巻、第4775頁に記載されたように
作成した。たとえば第6図のMMTV−3Tu mye
融合体の転写につき試験するため、第7図に示したプロ
ーブを使用した。このプローブは、第1 mycエクソ
ンに対するSma1部位5′から第1 myeエクソン
の3′末端におけるS s<1部位まで延在する。内生
myeプ四モータからの転写は、プローブ353及び5
20塩基対長さの断片を保護するRNAを産生じ、MM
TVプロモータからの転写はこのプ四−プを完全に保護
すると共に、次のハイブリッド化工程において942塩
基対長さのバンドとして現われる。
標識された単一鎖のプローブ断片を8M尿素5%アクリ
ルアミドゲルで単離し、電気溶出させ、かつパーク等(
1977Lセル第12巻、第721頁の変法で全RNA
ヘハイブリッド化させた。このハイブリッド化混合物は
5 Q OOOcpm〜10 Q、OOOcpmのプ四
−プ(S A= 108cpm/μg)と、10μりの
全細胞質RNAと、75%ホルムアミドと、500 m
MのNaC1と、20mMのトリス(PH75)と、1
mMのEDTAとを含有し、これについてはバラティ
等(1983)、セル第34巻、第779頁に記載され
ている。ハイブリッド化温度は、mRNAにハイブリッ
ド化すると思われるプ奮−プの領域におけるGC含有量
に応じて変化させた。ハイブリッド化は、1500単位
の81ヌクレアーゼ(ベーリンガー・マンハイム社)を
添加して完了させた。S1ヌクレアーゼ切断は、37℃
にて1時間行なった。次いで、これら試料をエタノール
沈澱させ、そして薄い8M尿素5%アクリルアミドゲル
にて電気泳動にかけた。
ルアミドゲルで単離し、電気溶出させ、かつパーク等(
1977Lセル第12巻、第721頁の変法で全RNA
ヘハイブリッド化させた。このハイブリッド化混合物は
5 Q OOOcpm〜10 Q、OOOcpmのプ四
−プ(S A= 108cpm/μg)と、10μりの
全細胞質RNAと、75%ホルムアミドと、500 m
MのNaC1と、20mMのトリス(PH75)と、1
mMのEDTAとを含有し、これについてはバラティ
等(1983)、セル第34巻、第779頁に記載され
ている。ハイブリッド化温度は、mRNAにハイブリッ
ド化すると思われるプ奮−プの領域におけるGC含有量
に応じて変化させた。ハイブリッド化は、1500単位
の81ヌクレアーゼ(ベーリンガー・マンハイム社)を
添加して完了させた。S1ヌクレアーゼ切断は、37℃
にて1時間行なった。次いで、これら試料をエタノール
沈澱させ、そして薄い8M尿素5%アクリルアミドゲル
にて電気泳動にかけた。
さらに、ノーザンハイブリッド化分析を次のように行な
った。全RNAを1%ホルムアルデヒド0.8%アガロ
ースゲルにて電気泳動にかけ、ニトロセルロースフィル
タに吸い取らせ(レーラツハ等(1979)、バイオケ
ミストリー第16巻、第4743頁)、そしてタウブ等
(1982)、PNAS−USA、第79巻、第783
7頁に記載されたようにニック翻訳されたプ彎−ブにハ
イブリッド化させた。分析した組織は胸腺、拌臓、肺臓
、腎臓、畢丸、肝臓、心臓、肺、骨格筋、脳、唾液腺及
び前立腺とした。
った。全RNAを1%ホルムアルデヒド0.8%アガロ
ースゲルにて電気泳動にかけ、ニトロセルロースフィル
タに吸い取らせ(レーラツハ等(1979)、バイオケ
ミストリー第16巻、第4743頁)、そしてタウブ等
(1982)、PNAS−USA、第79巻、第783
7頁に記載されたようにニック翻訳されたプ彎−ブにハ
イブリッド化させた。分析した組織は胸腺、拌臓、肺臓
、腎臓、畢丸、肝臓、心臓、肺、骨格筋、脳、唾液腺及
び前立腺とした。
MMT V −S−t u mye融合体(第6図)の
次の世代に一体化しかつ転移している両系列のネズミは
、唾液腺における融合体の転写を示したが、他の組織に
おいては示さなかった。
次の世代に一体化しかつ転移している両系列のネズミは
、唾液腺における融合体の転写を示したが、他の組織に
おいては示さなかった。
MMTV−8ma mye融合体(第4図)を有するこ
とが判明したネズミの2系列のうちの一方は検査した全
ての組織において遺伝子融合を示し、この発現のレベル
は唾液腺において特に高かった。
とが判明したネズミの2系列のうちの一方は検査した全
ての組織において遺伝子融合を示し、この発現のレベル
は唾液腺において特に高かった。
他方の系列は唾液腺、肺臓<畢丸、肺、脳及び前立腺に
おいてのみ遺伝子融合を示した。
おいてのみ遺伝子融合を示した。
4系列のネズミはMMT V −H3mye融合体(第
5図)を有した。1系列において、融合体は畢丸、肺、
唾液腺及び脳で転写され、第2の系列において融合体は
唾液腺においてのみ転写され、第3のものにおいては融
合体は試験した体組織のいずれにおいても転写されず、
第4の系列においては融合体は唾液腺と腸内組織におい
て転写された。
5図)を有した。1系列において、融合体は畢丸、肺、
唾液腺及び脳で転写され、第2の系列において融合体は
唾液腺においてのみ転写され、第3のものにおいては融
合体は試験した体組織のいずれにおいても転写されず、
第4の系列においては融合体は唾液腺と腸内組織におい
て転写された。
MMTV−Xba mya融合体を有することが判明し
た2つのネズミ系列において、この融合体は畢丸及び唾
液腺において転写された。
た2つのネズミ系列において、この融合体は畢丸及び唾
液腺において転写された。
第8図を参照して、R8V−S107と称するプラスミ
ドは、5107形質球増加症のmyc遺伝子(キルシ等
(1981)、ネイチャー、第293巻、第585頁)
のEcoRI断片をゴーマン等(1982)、PNAS
USA 第79巻、第6777頁に記載されたラウス
・サルフーマ・ウィルス(R8V)エンハンサ含有のプ
ラスミド(pR8V cat )の誘導体中へR8Vエ
ンハンサ配列に対するEcoRI部位3′にて標準組み
換えDNA技術を用いて挿入することにより生成させた
。クツラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ及
びSV40配列は全て、myc遺伝子によりこのベクタ
ーにおいて置換される。R8Vプロモータ配列はEco
RI断片が置換されると削除されて、R8Vエンハンサ
を完全なまま残す。
ドは、5107形質球増加症のmyc遺伝子(キルシ等
(1981)、ネイチャー、第293巻、第585頁)
のEcoRI断片をゴーマン等(1982)、PNAS
USA 第79巻、第6777頁に記載されたラウス
・サルフーマ・ウィルス(R8V)エンハンサ含有のプ
ラスミド(pR8V cat )の誘導体中へR8Vエ
ンハンサ配列に対するEcoRI部位3′にて標準組み
換えDNA技術を用いて挿入することにより生成させた
。クツラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ及
びSV40配列は全て、myc遺伝子によりこのベクタ
ーにおいて置換される。R8Vプロモータ配列はEco
RI断片が置換されると削除されて、R8Vエンハンサ
を完全なまま残す。
5107形質球増加症におけるmye遺伝子の初期転座
は、2種の正常なm7eプロモータ並びに未翻訳の第1
. mycエクソンの要部を削除し、5′対5′にて切
断myc遺伝子をα免疫グロブリン重鎖スイッチ配列に
隣接並置した。
は、2種の正常なm7eプロモータ並びに未翻訳の第1
. mycエクソンの要部を削除し、5′対5′にて切
断myc遺伝子をα免疫グロブリン重鎖スイッチ配列に
隣接並置した。
プラスミドR8v−8107の図示した領域 ”(
第8図)は次の通りである二叉鎖線を施こしたR8V配
列;細線でハツチングしたα/コード配列:左ハツチン
グした免疫ブレプリンαスイッチ配列; 右ハツチング
したmycエクソン。R8V−8107myeエクソン
に整列する薄いラインはpBR522配列を示している
。標識した制限酵素部位は次の通りである: (R)E
coRI ;(X)Xbal ;(P)Ps tl
;(K)Kpnl ;(H)HlndI[[;(B)B
anHI。ここに記載した分析に使用した5種のプロー
ブ(C−α、α−sw及びC−myc)につき使用した
配列を標識する。
第8図)は次の通りである二叉鎖線を施こしたR8V配
列;細線でハツチングしたα/コード配列:左ハツチン
グした免疫ブレプリンαスイッチ配列; 右ハツチング
したmycエクソン。R8V−8107myeエクソン
に整列する薄いラインはpBR522配列を示している
。標識した制限酵素部位は次の通りである: (R)E
coRI ;(X)Xbal ;(P)Ps tl
;(K)Kpnl ;(H)HlndI[[;(B)B
anHI。ここに記載した分析に使用した5種のプロー
ブ(C−α、α−sw及びC−myc)につき使用した
配列を標識する。
し独特なKpn −1部位3′にて融状化)の約500
個のコピーを、C57BL/6JxCD−1交配から得
られた卵の雄前核中へ注入した。ネズミはチャールス・
リバー・ラボラドリース社から得たもの(cD−1、異
系交配の白ネズミ)及びジャクソン・うざラドリース社
からのもの(C57BL/6J)とした。これら注入し
た卵を偽妊娠の養育雌ネズミへ移し、昇化するまで発育
させ、そして4週令にて出産動物を上記と同様にテール
から抽出されたDNAのサウザンプロット分析により注
入配列の保持につき試験した。分析した28匹のネズミ
のうち、2匹の雄が新たな遺伝子を保持したことが判明
し、次いで両者はこれら配列を胚芽ラインを介してメン
デル遺伝法則にしたがう単一位置の比率で転移した。
個のコピーを、C57BL/6JxCD−1交配から得
られた卵の雄前核中へ注入した。ネズミはチャールス・
リバー・ラボラドリース社から得たもの(cD−1、異
系交配の白ネズミ)及びジャクソン・うざラドリース社
からのもの(C57BL/6J)とした。これら注入し
た卵を偽妊娠の養育雌ネズミへ移し、昇化するまで発育
させ、そして4週令にて出産動物を上記と同様にテール
から抽出されたDNAのサウザンプロット分析により注
入配列の保持につき試験した。分析した28匹のネズミ
のうち、2匹の雄が新たな遺伝子を保持したことが判明
し、次いで両者はこれら配列を胚芽ラインを介してメン
デル遺伝法則にしたがう単一位置の比率で転移した。
これら創出雄ネズミのそれぞれの第1世代の遺伝子転移
子孫を、主たる内部組織及び器官から抽出されたRNA
を上記のように81ヌクレア一ゼ保護分析で分析するこ
とにより転位mye[転子の発現につき分析した。1系
列の子孫の心臓は、迷走性のmyc発現を示し、他の1
3個の組織は示さなかった。
子孫を、主たる内部組織及び器官から抽出されたRNA
を上記のように81ヌクレア一ゼ保護分析で分析するこ
とにより転位mye[転子の発現につき分析した。1系
列の子孫の心臓は、迷走性のmyc発現を示し、他の1
3個の組織は示さなかった。
戻し交配(C57B1/6Jへの)及び同系交配は残塊
かの遺伝子転移ネズミを産出したが、これらはサウザン
プロット分析において遺伝子転移子孫又はその親と同じ
制限部位パターンを示さなかった。創出雄ネズミとC5
7BL/6JfAネズミとの間の交配から誘導された第
1世代の子孫において、54匹のF1動物を分析し、こ
れらのうち19匹が新たに導入された遺伝子を受は継ぎ
、その結果は1ケ所においてへテロ接合体である創出ネ
ズミと一致した。しかしながら、分析した19匹の遺伝
子転移ネズミのうち、より少ないm7eハイブリッド化
断片に関し3種の性質的に異なるパターンが存在した。
かの遺伝子転移ネズミを産出したが、これらはサウザン
プロット分析において遺伝子転移子孫又はその親と同じ
制限部位パターンを示さなかった。創出雄ネズミとC5
7BL/6JfAネズミとの間の交配から誘導された第
1世代の子孫において、54匹のF1動物を分析し、こ
れらのうち19匹が新たに導入された遺伝子を受は継ぎ
、その結果は1ケ所においてへテロ接合体である創出ネ
ズミと一致した。しかしながら、分析した19匹の遺伝
子転移ネズミのうち、より少ないm7eハイブリッド化
断片に関し3種の性質的に異なるパターンが存在した。
これらのへテロ遺伝型が多重挿入及び(又は)創出ネズ
ミにお6ける胚芽ラベンモザイク現象の結果として生ず
る可能性を試験するため、2匹のF1ネズミ(1匹はz
8及び12KbのBamHIバンドを有し、他方は7.
8KbのBamHIバンドのみを有する)を交配させ、
そしてF2動物を分析した。これら2匹の交配につき出
産した1匹の雄ネズミは、2つの対立形質を受は継いだ
候補と考えられるR3V−8107myem伝子の充分
なコピーを有すると思われ、この雄ネズミを野性の雌ネ
ズミと戻し交配させた。分析した23匹の戻し交配子孫
のうち25匹全部がR8V−3107myc遺伝子を受
は継ぎ、これは12mネズネズミ所において2つの対立
形質を受は継いだことを強く示唆している。さらに予想
通り、高分子量の断片(12Kb)が単一の対立形質と
して分離した。
ミにお6ける胚芽ラベンモザイク現象の結果として生ず
る可能性を試験するため、2匹のF1ネズミ(1匹はz
8及び12KbのBamHIバンドを有し、他方は7.
8KbのBamHIバンドのみを有する)を交配させ、
そしてF2動物を分析した。これら2匹の交配につき出
産した1匹の雄ネズミは、2つの対立形質を受は継いだ
候補と考えられるR3V−8107myem伝子の充分
なコピーを有すると思われ、この雄ネズミを野性の雌ネ
ズミと戻し交配させた。分析した23匹の戻し交配子孫
のうち25匹全部がR8V−3107myc遺伝子を受
は継ぎ、これは12mネズネズミ所において2つの対立
形質を受は継いだことを強く示唆している。さらに予想
通り、高分子量の断片(12Kb)が単一の対立形質と
して分離した。
DNAレベルにて生ずる多形質性の他に、迷走性のmy
e発現も変位したかどうかを決定するため、野性雌動物
に対し上記の二重へテロ振合体の交配により得られた8
匹の動物につき心it■mRNAを分析した。8匹全部
がmye mRNAの増加を示し、その量は動物間で変
化すると思われた。より低いレベルの発現が、12Kb
のmycハイブリッド化バンドの存在により分離した。
e発現も変位したかどうかを決定するため、野性雌動物
に対し上記の二重へテロ振合体の交配により得られた8
匹の動物につき心it■mRNAを分析した。8匹全部
がmye mRNAの増加を示し、その量は動物間で変
化すると思われた。より低いレベルの発現が、12Kb
のmycハイブリッド化バンドの存在により分離した。
第2戻し交配世代の遺伝子転移ネズミの心臓におけるm
ycmRNAのレベルも変化した。F1雌動物をC57
B1/6J雄動物へ戻し交配して7匹の子供を産ませ、
そのうち6匹がR8V−8107myc遺伝子を受は継
いだ。これらネズミの7匹全部を発現につき分析した。
ycmRNAのレベルも変化した。F1雌動物をC57
B1/6J雄動物へ戻し交配して7匹の子供を産ませ、
そのうち6匹がR8V−8107myc遺伝子を受は継
いだ。これらネズミの7匹全部を発現につき分析した。
6匹の遺伝子転移ネズミのうち3匹が心臓におけるmy
e mRNAのレベルを上昇させたのに対し、他の3匹
においては心臓におけるmye mRNAのレベルがR
3V−8107myc遺伝子を持たないネズミから区別
できなかった。この結果は、尚レベルの心臓制限mye
mRNAを転写させた1つの多形質R8V−3107
myc位置の他に、転写上体止している他の分mR8V
−8107mye位置が存在しうることを示唆している
。
e mRNAのレベルを上昇させたのに対し、他の3匹
においては心臓におけるmye mRNAのレベルがR
3V−8107myc遺伝子を持たないネズミから区別
できなかった。この結果は、尚レベルの心臓制限mye
mRNAを転写させた1つの多形質R8V−3107
myc位置の他に、転写上体止している他の分mR8V
−8107mye位置が存在しうることを示唆している
。
発癌性試験
本発明の動物を使用して、発癌物質と疑がわれ物質を次
のように試験することができる。発癌性が弱いと思われ
る物質を試験するために動物を使用する場合には、最も
腫瘍を発生し易いと予想される遺伝子転移ネズミを選択
し、その際このネズミを少量の公知発癌物質に露呈させ
、かつ最初に腫瘍を発生したネズミを選択する。選択さ
れた動物及びその子孫を試験動物として使用し、その際
これら動物を発癌物質であると疑かわれる物質に露呈さ
せかつ発癌性の表示として新生物の生長を測定する。6
受性の低い動物を使用して、より強度の発癌性物質を試
験する。選択過程に使用する公知発癌物質の種類及び濃
度を変化させて、所望感度の動物を選択することができ
る。極端な感度が望ましい場合、選択される試験ネズミ
は自然に腫瘍を発生するネズミで構成することができる
。
のように試験することができる。発癌性が弱いと思われ
る物質を試験するために動物を使用する場合には、最も
腫瘍を発生し易いと予想される遺伝子転移ネズミを選択
し、その際このネズミを少量の公知発癌物質に露呈させ
、かつ最初に腫瘍を発生したネズミを選択する。選択さ
れた動物及びその子孫を試験動物として使用し、その際
これら動物を発癌物質であると疑かわれる物質に露呈さ
せかつ発癌性の表示として新生物の生長を測定する。6
受性の低い動物を使用して、より強度の発癌性物質を試
験する。選択過程に使用する公知発癌物質の種類及び濃
度を変化させて、所望感度の動物を選択することができ
る。極端な感度が望ましい場合、選択される試験ネズミ
は自然に腫瘍を発生するネズミで構成することができる
。
癌防止試験
本発明の動物を使用して、新生物の発生に対し保護を与
える能力につき物質を試験することができる。動物を、
未処理比較の遺伝子転移動物と並行して、物質で処理す
る。処理動物における新生物発生の比較的低い発病率を
保護の表示として検出する。
える能力につき物質を試験することができる。動物を、
未処理比較の遺伝子転移動物と並行して、物質で処理す
る。処理動物における新生物発生の比較的低い発病率を
保護の表示として検出する。
組織培養
本発明の遺伝子転移動物を、細胞培養のだめの細胞源と
して使用することができる。遺伝子転移ネズミの組織を
、DNA若しくはRNAを直接分析するか或いは遺伝子
により発現され九螢白質につき組織を分析することによ
り、活性化腫瘍遺伝子の存在につき分析する。遺伝子を
有する組織の細胞を標準組織培養技術により培養し、こ
れらを使用して、たとえば心臓組織のような一般に培養
困難な組織からの細胞の機能を研究することができる。
して使用することができる。遺伝子転移ネズミの組織を
、DNA若しくはRNAを直接分析するか或いは遺伝子
により発現され九螢白質につき組織を分析することによ
り、活性化腫瘍遺伝子の存在につき分析する。遺伝子を
有する組織の細胞を標準組織培養技術により培養し、こ
れらを使用して、たとえば心臓組織のような一般に培養
困難な組織からの細胞の機能を研究することができる。
寄託
第3.4.5.6及び8図に示した融合逮転子を有する
プラスミドをアメリカン・タイプ・カルチャー・プレク
ション(ミズーリ州、ロックビル在)に寄託し、それぞ
れATCC受託番号第39745号、第59746号、
第59747号、第59748号及び第59749号を
受けている。
プラスミドをアメリカン・タイプ・カルチャー・プレク
ション(ミズーリ州、ロックビル在)に寄託し、それぞ
れATCC受託番号第39745号、第59746号、
第59747号、第59748号及び第59749号を
受けている。
他の具体例
本発明の範囲内において他の具体例も可能である。たと
えば、遺伝子転移動物の任意の種類を使用することが−
できる◇たとえば、成る場合には望ましくは、発生的に
ネズミよりもヒトに近い赤毛猿のような霊長動物を動物
種類として使用することもできる。
えば、遺伝子転移動物の任意の種類を使用することが−
できる◇たとえば、成る場合には望ましくは、発生的に
ネズミよりもヒトに近い赤毛猿のような霊長動物を動物
種類として使用することもできる。
第1図はネズミのmyc遺伝子と整列領域とを有するプ
ラスミドの領域の略図であり、 第2図はネズミの哺乳類腫瘍ウィルスの長い末端反復(
MMTV LTR)配列を有するプラスミドpA9領
域を示す略図であり、 第3〜6図及び第8図は活性化腫瘍遺伝子融合体の略図
であり、 第7図は活性化myc融合体を検出するのに有用なプロ
ーブの略図である。
ラスミドの領域の略図であり、 第2図はネズミの哺乳類腫瘍ウィルスの長い末端反復(
MMTV LTR)配列を有するプラスミドpA9領
域を示す略図であり、 第3〜6図及び第8図は活性化腫瘍遺伝子融合体の略図
であり、 第7図は活性化myc融合体を検出するのに有用なプロ
ーブの略図である。
図面の浄″:l(内容:二変更なし)
MMTV
MMTV rnyc myeE
X 、I EX 、2 EX 3IG 4
X 、I EX 、2 EX 3IG 4
Claims (20)
- (1)胚芽細胞と体細胞とが、動物又はこの動物の先祖
に胎児段階で導入された活性化腫瘍遺伝子配列を有する
ことを特徴とする遺伝子転移の非ヒト成熟核動物。 - (2)動物の染色体が、腫瘍遺伝子配列のコード配列と
実質的に同じ内生コード配列を含む特許請求の範囲第1
項記載の動物。 - (3)腫瘍遺伝子配列が、内生コード配列の位置とは異
なる部位において動物の染色体中へ一体化されている特
許請求の範囲第2項記載の動物。 - (4)腫瘍遺伝子配列の転写が、内生コード配列の転写
を制御するプロモータ配列とは異なるプロモータ配列の
制御下にある特許請求の範囲第2項記載の動物。 - (5)腫瘍遺伝子配列の転写を制御するプロモータ配列
が誘発可能である特許請求の範囲第4項記載の動物。 - (6)腫瘍遺伝子配列がc−myc遺伝子のコード配列
からなる特許請求の範囲第1項記載の動物。 - (7)腫瘍遺伝子配列の転写がウィルスプロモータ配列
の制御下にある特許請求の範囲第1項記載の動物。 - (8)ウィルスプロモータ配列がMMTVプロモータの
配列からなる特許請求の範囲第7項記載の動物。 - (9)ウィルスプロモータ配列がRSVプロモータの配
列からなる特許請求の範囲第7項記載の動物。 - (10)腫瘍遺伝子配列の転写が合成プロモータ配列の
制御下にある特許請求の範囲第1項記載の動物。 - (11)動物がゲツ歯動物である特許請求の範囲第1項
記載の動物。 - (12)ゲツ歯動物がネズミである特許請求の範囲第1
1項記載の動物。 - (13)発癌物質の疑いがある物質を試験するに際し、
この物質に、胚芽細胞と体細胞とが動物又はこの動物の
先祖に胎児段階で導入された活性化腫瘍遺伝子配列を有
する遺伝子転移の非ヒト成熟核動物を露出させかつ発癌
性の表示として新生物を検出することを特徴とする試験
方法。 - (14)胚芽細胞と体細胞とが動物又はこの動物の先祖
に胎児段階で導入された活性化腫瘍遺伝子配列を有する
遺伝子転移の非ヒト成熟核動物の体細胞を培養すること
を特徴とする細胞培養物の形成方法。 - (15)動物の胚芽中へ活性化腫瘍遺伝子配列を導入す
ることを特徴とする、新生物を発生する可能性が増大し
た遺伝子転移成熟核動物の産出方法。 - (16)活性化腫瘍遺伝子配列が、活性化ウィルス配列
又は合成プロモータ配列に融合した腫瘍遺伝子配列から
なる融合遺伝子を含む特許請求の範囲第15項記載の方
法。 - (17)活性化腫瘍遺伝子配列が腫瘍遺伝子src、y
es、fps、abl、ros、fgr、erbB、f
ms、mos、raf、Ha−ras−1、Ki−ra
s2、Ki−ras1、myc、myb、fos、sk
i、rel、sis、N−myc、N−ras、Bly
m、mam、neu、erbA1、ra−ras、mh
t−myc、myc、myb−ets、raf−2、r
af−1、Ha−ros−2、erbBの1種における
DNA配列からなる特許請求の範囲第15項記載の方法
。 - (18)新生物の発生に対し保護を与えると思われる物
質を試験するに際し、胚芽細胞と体細胞とが動物又はこ
の動物の先祖に胎児段階で導入された活性化腫瘍遺伝子
配列を有することを特徴とする遺伝子転移の非ヒト成熟
核動物を前記物質で処理し、かつ前記保護の表示として
前記未処理動物に比較して新生物発生の発病率低下を検
出することを特徴とする試験方法。 - (19)処理動物及び未処理動物を、前記物質で動物を
処置する前又は後又は同時に発癌物質に露呈させること
をさらに含む特許請求の範囲第18項記載の方法。 - (20)ATCC受託番号第59745、59746、
59747、59748又は59749号を有するプラ
スミド。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US623774 | 1984-06-22 | ||
US1984623774A US4736866B1 (en) | 1984-06-22 | 1984-06-22 | Transgenic non-human mammals |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6181743A true JPS6181743A (ja) | 1986-04-25 |
JPH0548093B2 JPH0548093B2 (ja) | 1993-07-20 |
Family
ID=24499353
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP60134452A Granted JPS6181743A (ja) | 1984-06-22 | 1985-06-21 | トランスジェニック動物 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4736866B1 (ja) |
EP (1) | EP0169672B1 (ja) |
JP (1) | JPS6181743A (ja) |
AT (1) | ATE76102T1 (ja) |
CA (1) | CA1341442C (ja) |
DE (1) | DE3586020D1 (ja) |
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