JP5670755B2 - 翻訳プロファイリング及び分子表現型解析のための方法及び組成物 - Google Patents
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Description
本出願は、2008年3月12日に出願された米国特許仮出願第61/036,049号、2008年3月12日に出願された第61/036,058号、2008年3月21日に出願された61/070,327号、2008年11月12日に出願された第61/199,108号の利益を請求するものであり、これらの出願は参照によりそれらの全体が本明細書中に組み込まれる。
(連邦支援研究に関する記載)
本発明は、以下の助成金番号の米国政府支援下で行われた:国立老化研究所により授与されたAG09464、国立精神衛生研究所により授与されたMH074866、国立薬害研究所により授与されたDA10044及び5F32DA021487、国立衛生研究所/国立研究資源センターにより授与された5UL1RR024143、及び国立神経疾患脳卒中研究所により授与されたNS34696。米国政府は、本明細書中に提供されている内容に対して特定の権利を有する場合がある。
(参照による組み込み)
本明細書中で言及される出版物、特許、及び特許出願は全て、あたかも個々の出版物、特許、又は特許出願が具体的に及び個々に提示されて参照により組み込まれたのと同じ程度に、言及により本明細書中に組み込まれる。
本発明の特定の実施形態では、例えば以下が提供される:
(項目1)
同時制御された遺伝子セットを特定する方法であって、
(a)髄鞘形成に関連する遺伝子を発現する複数の細胞タイプの翻訳プロファイルを決定する工程、
(b)前記翻訳プロファイルを比較して、どの追加的遺伝子が同様に制御されるかを決定し、それにより髄鞘形成に関与する同時制御された遺伝子セットを特定する工程を含む方法。
(項目2)
髄鞘形成と関連する前記遺伝子がMbpである、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記遺伝子セットが、Plp1、Cnp、Mog、Mal、及びMobpからなる群から選択される少なくとも2つの遺伝子を含む、項目1にs記載の方法。
(項目4)
表9に列挙されている少なくとも2つの遺伝子を含む、髄鞘形成に関与する同時制御された遺伝子セット。
(項目5)
Plp1、Cnp、Mog、Mal、又はMobpの少なくとも1つを含む、項目4に記載の遺伝子セット。
(項目6)
全組織マイクロアレイ技術では検出不能である、細胞タイプで富化された1つ又は複数の遺伝子を検出する方法であって、
(a)細胞タイプについての翻訳プロファイルを評価する工程と、
(b)前記翻訳プロファイルを全組織マイクロアレイの結果と比較する工程と、
(c)前記全組織マイクロアレイの前記結果に存在しない、前記翻訳プロファイル中の1つ又は複数の遺伝子の存在を決定する工程を含み、
それにより前記全組織マイクロアレイ技術では検出不能である、細胞タイプで富化された1つ又は複数の遺伝子を検出する方法。
(項目7)
前記細胞タイプにおいて富化された前記遺伝子の20%、30%、又は40%超が、前記全組織マイクロアレイ技術で検出不能である、項目6に記載の方法。
(項目8)
前記細胞タイプが、線条体細胞、小脳細胞、皮質細胞、視床下部細胞、海馬細胞、脳幹細胞、及び脊髄細胞からなる群から選択される、項目6に記載の方法。
(項目9)
前記翻訳プロファイルの評価がマイクロアレイの使用を伴う、項目6に記載の方法。
(項目10)
中型星状神経細胞で富化されたmRNAを特定する方法であって、
(a)中型星状神経細胞で発現される遺伝子に特異的な調節領域により制御されるリボソームタンパク質を生物中で発現させる工程と、
(b)mRNAに付随している前記リボソームタンパク質を含む複合体を単離する工程と
(c)前記複合体中のmRNAを特定する工程と、
(d)前記mRNAを、参照試料から特定されたmRNAと比較する工程とを含む方法。
(項目11)
前記中型星状神経細胞で富化されたmRNAが差次的に発現される、項目10に記載の方法。
(項目12)
前記調節領域が、線条体黒質ニューロンで発現される遺伝子に特異的である、項目10に記載の方法。
(項目13)
前記調節領域が、線条体淡蒼球ニューロンで発現される遺伝子に特異的である、項目10に記載の方法。
(項目14)
前記発現が、細菌人工染色体により媒介される、項目10に記載の方法。
(項目15)
前記調節領域が、Drd1a又はDrd2遺伝子座に由来する調節配列を含む、項目10に記載の方法。
(項目16)
前記発現が、細菌人工染色体を生物に導入する工程を含む、項目10に記載の方法。
(項目17)
前記中型星状神経細胞が、疾患又は障害に関連している、項目10に記載の方法。
(項目18)
前記疾患又は障害が、パーキンソン病、依存症、注意欠陥過活動性障害、又はハンチントン病のいずれか1つである、項目17に記載の方法。
(項目19)
前記方法が、前記疾患又は障害を治療するための候補となる標的選択の誘導に使用される、項目17に記載の方法。
(項目20)
前記リボソームタンパク質がL10aである、項目10に記載の方法。
(項目21)
前記リボソームタンパク質がmRNAと直接的に結合しない、項目10に記載のの方法。
(項目22)
検出可能なタグを発現する工程をさらに含む項目10に記載の方法。
(項目23)
前記検出可能なタグがeGFPである、項目22に記載の方法。
(項目24)
前記単離する工程が架橋試薬を用いずに実施される、項目10に記載の方法。
(項目25)
小分子、薬物、抗体、ハイブリッド抗体、抗体断片、siRNA、アンチセンスRNA、アプタマー、タンパク質、又はペプチドを前記神経細胞に投与する工程をさらに含む項目10に記載の方法。
(項目26)
前記薬物がコカインである、項目25に記載の方法。
(項目27)
前記mRNAが、マイクロアレイにさらに配置されている、項目10に記載の方法。
(項目28)
前記調節領域が、Drd1a遺伝子座に由来する調節配列を含む、項目10に記載の方法。
(項目29)
翻訳プロファイルが、Tac1、Pdyn、Slc35d3、Zfp521、Ebf1、Stmn2、Gnb4、Nrxn1、Eya1、Isl1、Gng2、又はCrymを含む、項目28に記載の方法。
(項目30)
運動ニューロンで富化されたmRNAを特定する方法であって、
(a)運動ニューロンで発現される遺伝子に特異的な調節領域により制御されるリボソームタンパク質を生物中で発現させる工程と、
(b)mRNAに付随している前記リボソームタンパク質を含む複合体を単離する工程
と
(c)前記複合体中の前記mRNAを特定する工程と、
(d)前記mRNAを、参照試料から特定されたmRNAと比較する工程とを含む方法。
(項目31)
調節領域が、コリンアセチルトランスフェラーゼ(Chat)遺伝子座に由来する調節配列を含む、項目16に記載の方法。
(項目32)
運動ニューロンが脳幹運動ニューロンである、項目16に記載の方法。
(項目33)
運動ニューロンが脊髄運動ニューロンである、項目16に記載の方法。
(項目34)
運動ニューロンが上位運動ニューロンである、項目16に記載の方法。
(項目35)
富化されたmRNAが、表19に列挙されているmRNAの1つ又は複数を含む、項目16に記載の方法。
(項目36)
小脳細胞の翻訳プロファイルを評価するための方法であって、
(a)小脳遺伝子に特異的な調節領域により制御されるリボソームタンパク質を前記細胞中で発現させる工程と、
(b)mRNAに付随している前記リボソームタンパク質を含む少なくとも1つの複合体を前記細胞から単離する工程と、
(c)前記複合体に由来する前記mRNAを特定し、それにより翻訳プロファイルを生成する工程を含む方法。
(項目37)
前記発現させる工程が、細胞又は生物を細菌人工染色体で形質導入する工程を含む、項目36に記載の方法。
(項目38)
前記小脳細胞が、疾患又は障害を伴っている、項目36に記載の方法。
(項目39)
前記疾患又は障害が運動失調症である、項目38に記載の方法。
(項目40)
前記方法が、前記疾患又は障害を治療するための候補となる標的選択の誘導に使用される、項目38に記載の方法。
(項目41)
前記リボソームタンパク質がL10aである、項目36に記載の方法。
(項目42)
前記リボソームタンパク質がmRNAと直接的に結合しない、項目36に記載の方法。
(項目43)
検出可能なタグを発現する工程をさらに含む項目36に記載の方法。
(項目44)
前記検出可能なタグがeGFPである、項目43に記載の方法。
(項目45)
前記単離する工程が架橋試薬を用いずに実施される、項目36に記載の方法。
(項目46)
前記小脳細胞がプルキンエ細胞である、項目36に記載の方法。
(項目47)
前記小脳細胞がベルクマングリアである、項目36に記載の方法。
(項目48)
小分子、薬物、抗体、ハイブリッド抗体、抗体断片、siRNA、アンチセンスRNA、アプタマー、タンパク質、又はペプチドをニューロンに投与する工程をさらに含む項目36に記載の方法。
(項目49)
前記mRNAが、マイクロアレイにさらに配置されている、項目36に記載の方法。
(項目50)
前記調節領域が、Pcp2遺伝子座に由来する調節配列を含む、項目36に記載の方法。
(項目51)
翻訳プロファイルが、表22に列挙されている任意の1つ又は複数の遺伝子を含む、項目50に記載の方法。
(項目52)
前記調節領域が、Septin4遺伝子座に由来する調節配列を含む、項目36に記載の方法。
(項目53)
翻訳プロファイルが、表23に列挙されている任意の1つ又は複数の遺伝子を含む、項目52に記載の方法。
(項目54)
内因性調節領域に作用可能に連結されたリボソームタンパク質及び検出可能なタグをコードする核酸配列を発現するように遺伝子操作された組換えベクターを含むキット。
(項目55)
前記検出可能なタグがeGFPである、項目54に記載のキット。
(項目56)
前記リボソームタンパク質がL10aである、項目54に記載のキット。
(項目57)
前記リボソームタンパク質が、前記検出可能なタグとインフレームで融合されている、項目54に記載のキット。
(項目58)
前記組換えベクターが細菌人工染色体である、項目54に記載のキット。
(項目59)
前記内因性調節領域が、目的遺伝子の5’及び/又は3’非翻訳配列を含む、項目54に記載のキット。
(項目60)
前記目的遺伝子が、線条体細胞、小脳細胞、皮質細胞、視床下部細胞、海馬細胞、脳幹細胞、及び脊髄細胞からなる群から選択される細胞で発現される、項目59に記載のキット。
本開示は、異質性組織及び細胞タイプの翻訳プロファイリング及び分子表現型解析に有用な方法及び組成物を提供する。1つの実施形態では、本方法を使用して、以前は未定義だった細胞タイプを定義し、疾患及び障害の分子標的を特定し、特定の生物学的及び/又は医学的関連機能に関して同時制御された遺伝子セットを特定する方法を提供することができる。
本発明の実施形態では、細胞タイプ又は細胞サブタイプ特異的ポリソームmRNAを単離するための方法が提供される。上記方法は、翻訳を支援しポリソーム複合体を構築することができる機能的タグ化リボソーム又はリボソーム複合体に帰着する分子タグ化リボソームタンパク質を使用することを含む。リボソームは、分子的にタグ化することができ、1つ又は複数の目的の細胞タイプ又は細胞サブタイプで発現させることができる。本開示の目的のための分子タグ化リボソームタンパク質は、「融合タンパク質」又は「タグ化タンパク質」又は「分子タグ化融合タンパク質」又は「分子タグ化リボソームタンパク質」と置き換え可能に参照される。種々の実施形態では、これらの融合タンパク質は、リボソームタンパク質の全て又は部分を含有している。ある実施形態では、リボソームのタグ化は、タグ化タンパク質の天然機能又は分布の異常を引き起こすことはなく、したがってその結果として機能的リボソーム、機能的リボソーム複合体、又は機能的ポリソームがもたらされる。すなわち、分子的にタグ化されているが、天然リボソームタンパク質の生物活性を有する部分が保持されており、完全リボソーム中で機能してmRNAの翻訳又はmRNAとの結合を実行することができる。幾つかの実施形態では、分子タグ化リボソームは、選択した細胞タイプ又は細胞サブタイプでの発現を指図する調節エレメント又は転写ユニットの制御下にある分子タグ化リボソームタンパク質をコードする核酸を、細胞、培養物、切片、又は生物全体に導入することにより、目的の器官、組織、細胞タイプ、又は細胞サブタイプで発現される。幾つかの実施形態では、タグ化されるリボソームタンパク質は、分子タグ化タンパク質を発現する細胞と同一の種に由来してもよく又は異なる種に由来してもよい。
タグ化タンパク質をコードする核酸は、当技術分野で周知の遺伝子工学法並びにクローニング及び発現ベクターを使用して生成することができる。幾つかの実施形態では、天然に存在するか又は合成的に生成された核酸又は遺伝子は、リボソームタンパク質として機能して、翻訳を支援するか又はポリソーム性の翻訳中リボソームmRNAとの結合(直接的又は間接的)若しくは付随を支援するように遺伝子操作することができる。分子的にタグ化されるリボソームタンパク質をコードする核酸は、当技術分野で公知である任意の方法を使用して取得することができる。核酸は、例えば、公表されている配列に基づくオリゴヌクレオチドプライマーを使用してPCRにより取得することができる。他の関連リボソーム(例えば、他の種に由来する)は、手持ちのリボソームをプローブとして使用して、適切な核酸ライブラリーを低度、中程度、又は高度なストリンジェンシーでハイブリダイゼーションすることにより取得することができる。
分子タグは、目的細胞(又はタグ化リボソームをそこから単離することになる細胞画分、又はタグに結合する試薬と接触することになる他の細胞)に存在しないか又は目的細胞に到達可能ではない任意のタンパク質(又はその断片、部分、類似体、又は誘導体)であってよく、タグを認識し、溶液に(それによりタグに)到達可能である試薬(抗体など)又は方法(光学的、蛍光的、又は磁気的な選別など)が分子タグのために存在する。
1) リボソームの単離
細胞、培養細胞、及び組織から、リボソーム/タグ化リボソーム、特にポリソーム(mRNAと結合したリボソームのクラスター)/タグ化ポリソームを単離するための種々の方法が存在する(例えば、Bommer et al., 1997, Isolation and characterization of eukaryotic polysomes, in Subcellular Fractionation, Graham and Rickwood (eds.), IRL Press, Oxford, pp. 280−285を参照;参照によりその全体が本明細書中に組み込まれる)。ポリソームは、ポリリボソーム、リボソーム複合体、又はリボソームクラスターと置き換え可能に参照される。好ましい実施形態では、単離されたポリソーム(リボソーム−mRNA複合体)は、翻訳を支援することができ、mRNAに付随することができ、及び/又は翻訳因子に付随することができる機能的リボソームを含有している。
a 単離中はリボソームサブユニットをmRNA上で維持すること:エメチン又はシクロヘキシミドなどの翻訳停止化合物を添加して翻訳を停止させることができ、それによりmRNAがリボソームから脱離することを低減又は防止する。好ましい実施形態では、単離は、架橋及び架橋試薬を用いずに達成される;
b 内因性RNAase活性を阻害すること:RNAase阻害剤を緩衝液に添加して、mRNAの完全性を維持することができる;
c ポリソームを単離すること:組織又は細胞均質化の後、全ポリソームを、少なくとも高塩濃度緩衝液、例えば約100〜150mM KClの存在下でポストミトコンドリア上清を調製することにより単離する;
d 非変性条件下で粗ER結合ポリソームを可溶化すること:表面活性剤を添加して小胞体膜から膜結合型ポリソームを放出することもでき、全ポリソームを、通常は例えばスクロースクッションによる遠心分離により収集する。
タグ化リボソームが単離されると、当技術分野で周知の化学的方法、機械的方法、又は他の方法を使用して、タンパク質と複合体化した付随mRNAを単離することができる。例えば、mRNAの溶出は、緩衝液にEDTAを添加することにより達成され、これによりポリソームが分断され、解析用の結合mRNAの単離が可能になる(Schutz, et al. (1977), Nucl. Acids Res. 4:71−84; Kraus and Rosenberg (1982), Proc. Natl. Acad. Sci. USA 79:4015−4019)。加えて、単離されたポリソーム(単離マトリックスに結合しているか又は単離マトリックスから分離されている)は、Tri試薬(Sigma社製)又はトリアゾール(Sigma社製)などの試薬を使用するRNA単離手順に直接投入することができる。特定の実施形態では、poly A.sup.+mRNAは、oligodTセルロースとのハイブリダイゼーションにより優先的に単離される。mRNA単離法は、Sambrook et al., 2001, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Third Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y.及びAusubel et al., 1989, Current Protocols in Molecular Biology, Green Publishing Associates and Wiley Interscience, N.Y.に記載されており、本明細書によりそれらは両方とも参照によりそれらの全体が組み込まれる)。
1) 一般
当業者に周知である方法を使用して、発現に必要である適切な転写及び翻訳制御シグナルに作用して結合されたタグ化リボソームタンパク質コード配列を含有するベクターを構築することができる。これらの方法には、例えばin vitro組換えDNA技術及びin vivo遺伝子換えが含まれる。例えば、Sambrook et al., 2001, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Third Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y.及びAusubel et al., 1989, Current Protocols in Molecular Biology, Green Publishing Associates and Wiley Interscience, N.Y.に記載されている技術を参照されたい。
本発明のある実施形態では、調節配列の制御下にあるタグ化リボソームタンパク質のコード配列を含む核酸構築体を含有するベクター、細胞系統、及び生物系統が提供される。本明細書中に記載の方法により、タグ化リボソームタンパク質を、天然に存在するか又は所望の発現パターンを反復するように遺伝子操作された調節エレメントを使用して、特定の選択された細胞タイプ、細胞サブタイプ、分子経路又は回路において選択的に発現させる。そのような発現は、選択した細胞タイプ、サブタイプ、経路、回路、及び/又は発生ポイントで発現された特徴的な又は内因性に制御された遺伝子に由来する調節配列又は転写ユニットを使用して、タグ化リボソームタンパク質の発現を駆動することにより達成される。ある実施形態では、特定の細胞タイプは、共通の特徴を共有する識別できる細胞群を含む混合細胞集団内に存在する細胞タイプである。この群は、形態学的に、解剖学的に、遺伝学的に、又は機能的に特定可能であってもよい。他の実施形態では、この群は、形態学的に、遺伝学的に、及び発生的に区別不能であるが、遺伝学的には区別可能であってもよい。この細胞集団は、選択的に発現されるため、内因性に制御された特徴的遺伝子(characterizing gene)の正の発現に基づいて特徴付け又は認識することができる。調節配列/エレメントの幾つか又は全てを核酸(導入遺伝子を含む)に組み込んで、タグ化リボソームタンパク質コード配列の発現を制御することができる。調節配列又はエレメントの例には、これらに限定されないが、エンハンサー配列、インスレーター配列、サイレンサー配列、又は前記配列の組み合わせが含まれる。ある実施形態では、構成的に発現されない(つまり、その発現パターンがある種の空間的又は時間的な制限を示す)遺伝子を、調節配列の供給源として使用する。他の実施形態では、構成的に発現される遺伝子を、調節配列の供給源として使用する。他の実施形態では、調節配列は、所望の発現特徴及びパターンを達成するように遺伝子操作又は改変されている。
ある実施形態では、タグ化リボソームタンパク質産物をコードするヌクレオチド配列で、特徴的遺伝子のゲノムクローン/遺伝子座にある特徴的遺伝子コード配列の全て又は部分を置換し、特徴的遺伝子非コード制御配列の全て又は一部のみを残してもよい。
細胞内でのタグ化リボソームタンパク質の発現レベルが単離手順の効率化に必要である場合があるため、本発明のある実施形態では、プロモーターなどの内因性調節配列が、第2の発現構築体をその後に活性化するタンパク質の発現を駆動するバイナリー系を使用することができる。この第2の発現構築体は、プロモーターなどの強力な調節配列を使用して、内因性調節領域自体を使用して可能であるよりも高いレベルで、タグ化リボソーム融合タンパク質の発現を駆動する。
ある実施形態では、少なくともタグ化リボソーム融合タンパク質遺伝子のコード領域を、特徴的遺伝子のゲノム遺伝子座に由来する調節配列の全て又は部分に作用可能に連結し、その後タグ化リボソーム融合タンパク質遺伝子コード配列及び特徴的遺伝子配列を、誘導可能又は抑制可能な転写調節系に作用可能に連結することにより、タグ化リボソーム融合タンパク質遺伝子を条件的に発現させることができる。
これらの誘導可能又は抑制可能な転写調節系のトランス活性化因子は、ベクターに遺伝子操作された配列と特異的に相互作用するように設計されている。そのような系には、テトラサイクリン(「tet系」)、インターフェロン、エストロゲン、エクジソン、Lacオペレーター、プロゲステロンアンタゴニストRU486、及びラパマイシン(FK506)により制御される系が含まれており、tet系が特に好ましい(例えば、Gingrich and Roder, 1998, Annu. Rev. Neurosci. 21: 377−405を参照;その全体が参照により本明細書中に組み込まれる)。これらの薬物又はホルモン(又はそれらの類似体)は、天然又は変異体リガンド結合ドメイン、並びに内因性又は外因性のDNA結合ドメイン及び転写活性化ドメインで構成されるモジュール型トランス活性化因子に作用する。ある実施形態では、検出可能な又は選択可能なマーカーの発現は、in vitroでは培地中の、又はin vivoでは形質転換された生物の食餌中の薬物又はホルモンの濃度を変化させることにより制御することができる。
特徴的遺伝子配列及びタグ化リボソーム融合タンパク質遺伝子コード配列を含む核酸は、任意の利用可能な供給源から取得することができる。ほとんどの場合、特徴的遺伝子配列及び/又はタグ化リボソーム融合タンパク質遺伝子コード配列の全て又は部分は、例えば、GenBank、UniGene、及びマウスゲノムインフォマティクス(MGI、Mouse Genome Informatic)データベースなどの公表されている利用可能なデータベースにおいて公知である。ハイブリダイゼーションプローブは、手持ちの配列の部分を用いて、当技術分野で非常に日常的な方法(例えばフィルターハイブリダイゼーション又はPCR増幅)を使用して設計して、適切な配列を含有するクローンを例えば核酸のライブラリー又は他の供給源中で特定することができる。ある種に由来する目的遺伝子の配列が既知であり、別の種に由来する対応遺伝子が所望の場合、既知の配列に基づいてプローブを設計することは当技術分野で日常的である。プローブは、配列が所望な種に由来する核酸にハイブリダイズし、例えば、目的の種に由来するゲノム又はDNAライブラリーに由来する核酸にハイブリダイゼーションする。 限定ではなく例として、ゲノムクローンは、探索されているゲノムDNAとプローブとの関連性に依存して、適切なハイブリダイゼーション条件、例えば高ストリンジェンシー条件、低ストリンジェンシー条件、又は中程度のストリンジェンシー条件下でゲノムDNAライブラリーを探索することにより特定することができる。
手短に言えば、特徴的遺伝子ゲノム配列は、好ましくは、コスミド、酵母人工染色体(YAC)、及び細菌人工染色体(BAC)などの配列の長さ(例えば10kbの配列)を収容することができ、特徴的遺伝子配列の全て又は部分を含む少なくとも50、70、80、100、120、150、200、250、300、400、500、又は1000kbの配列を包含することができるベクターに存在する。ベクターインサートが大型であればあるほど、目的の特徴的遺伝子シス及びトランス配列を含有するベクターを特定する可能性がより高くなる。幾つかの実施形態では、特徴的な内因性に制御された遺伝子のゲノム配列全体(つまりゲノム遺伝子座)を含有するベクターが存在する。他の実施形態では、ゲノム配列全体を単一ベクターに収容することができないか、又はそのようなクローンが利用可能ではない。これらの場合(又はクローンがゲノム配列全体を含有するかどうか判明していない場合)、ベクターは、ゲノム配列を含有するベクターインサートのほぼ中央にコード配列の開始部位、つまり最も5’側の末端を有する特徴的遺伝子配列を少なくとも含有しており、及び/又は特徴的遺伝子コード配列の開始部位のいずれかの側に、少なくとも20kb、30kb、40kb、50kb、60kb、80kb、100kb、又は200kbのゲノム配列を有する。これは、当技術分野で公知である任意の方法により、例えば限定ではないが、配列決定法、制限酵素マッピング法、PCR増幅アッセイ法などにより決定することができる。
本明細書中に記載の方法は、選択した細胞タイプ内でタグ化リボソームタンパク質を発現する形質転換生物、例えばトランスジェニックマウスを提供する。幾つかの実施形態では、BAC媒介性組換え(Yang, et al., 1997, Nat. Biotechnol. 15(9):859−865)を使用して、形質転換生物を作製する。そのような発現は、特定の遺伝子の内因性調節配列及び転写ユニットを使用することにより達成され、この遺伝子の発現は、選択した細胞タイプの明確な特徴である(参照によりその全体が本明細書中に組み込まれる、2002年8月22日に国際公開第02/064749号パンフレットとして公開された「Collections of Transgenic Animal Lines (Living Library)」と題する、SerafiniによるPCT/US02/04765にも記載されているように)。一組の選択した細胞タイプ内でタグ化リボソームタンパク質を発現するトランスジェニック動物のコレクションを収集し、多くの場合これをBACアレイコレクション(BACarray collection)と呼ぶ。
1)宿主細胞へのベクターの導入
1つの態様では、調節配列及び分子タグ化融合タンパク質をコードする核酸を含有するベクターを、宿主細胞のゲノムに一過性に又は安定的に導入することができる。別の態様では、ベクターを一過性に形質移入することができ、その場合ベクターは組み込まれないがエピソームとして維持される。「宿主細胞」及び「組換え宿主細胞」という用語は、本明細書中では置き換え可能に使用される。
特定の実施形態は、マウス胚の単一核への前核マイクロインジェクション又は構築体を含むウイルスベクターによる感染を使用して、核酸を含有するベクターを導入する方法を包含する。マウス胚への前核インジェクション法は、当技術分野で周知であり、Hogan et al. 1986, Manipulating the Mouse Embryo, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, N.Y.及び1989年10月10日に交付されたWagnerらの米国特許第4,873,191号明細書に記載されており、それらの全体が参照により本明細書中に組み込まれる。核酸を挿入するウイルス法は、当技術分野で公知である。標的化送達には、レンチウイルス、レトロウイルス、アデノウイルス、単純ヘルペスウィルス、アデノ随伴ウイルス、又は遺伝子送達に適用できる任意の別のウイルスを使用することができる。
当技術分野で周知の方法を使用して、任意のモデル生物を遺伝子操作し、分子タグ化リボソームを発現させことができる。これらには、限定的ではないが、非ヒト霊長類、マウス、ラット、ヒツジ、イヌ、ウシ、ヤギ、ニワトリ、両生動物、魚類、ゼブラフィッシュ(ゼブラダニオ(Danio rerio))、ハエ(キイロショウジョウバエ(Drosophila melanogaster))、蠕虫(線虫(Caenorhabditis elegans))、又は酵母(又は他の真菌)を含むことができる。トランスジェニック動物とは、動物の細胞の1つ又は複数が、非内因性(つまり異種性)であり、その細胞の部分にある染色体外エレメントとして存在するか、又はその生殖細胞系DNAに(つまり、その細胞の大部分又は全てのゲノムの配列に)安定的に組み込まれている核酸を含む非ヒト動物である。ある実施形態では、トランスジェニック動物は、生殖細胞系配列の安定的変化を含む。異種性核酸は、例えば宿主動物の胚又は胚性幹細胞の遺伝子操作により、そのようなトランスジェニック動物の生殖細胞系に導入される。
形質転換生物系統の潜在的な創始体生物を、内因性の特徴的遺伝子の発現を特徴とする細胞の集団中でのリボソームによる分子タグ化融合タンパク質コード配列の発現についてスクリーニングすることができる。
幾つかの実施形態では、分子タグ化リボソームを発現する選択した細胞サブセット又は細胞集団を含有する形質転換生物系統のコレクションが提供される。幾つかの態様では、BACに関連する方法を使用して形質転換生物が作成された場合、これをBACアレイコレクションと呼ぶ。このコレクションは、少なくとも2つの個々の系統、好ましくは少なくとも5、10、25、50、100、500、1000、1500、2000、2500、5000、10,000、15,000、又は30,000の個々の系統を含む。個々の系統は各々、分子タグ化リボソームが発現される細胞サブセットの特定に基づいてコレクション用に選択される。
本明細書中に記載の実施形態は、特定の細胞及び/又は組織の翻訳プロファイリング及び分子表現型解析を提供する。タグ化リボソームタンパク質を有するポリソーム中で複合体化したmRNAを単離し、当技術分野で公知である任意の方法により解析することができる。1つの態様では、タグ化リボソームタンパク質を発現する細胞の翻訳プロファイルは、mRNAを単離しcDNAライブラリーを構築することにより、又は遺伝子発現解析用にRNAを標識することにより、例えばマイクロアレイにmRNAを配置することにより解析することができる。本発明の実施形態では、その全体が本明細書中に組み込まれる米国特許出願公開第2005/0009028号明細書に記載の技術が使用される。
1)感度
本明細書中で提供される方法は、任意の細胞、組織、又は生物、並びに任意の疾患又は障害に応用可能である。複雑な異質性組織又は器官系の個々の細胞サブタイプを照合する(interrogate)能力によりもたらされる感度は、全組織マイクロアレイ及びin situハイブリダイゼーションなどの他の技術より高い可能性がある解像度を提供する。幾つかの実施形態では、1つ又は複数の細胞サブタイプに特異的なmRNA/遺伝子を検出するTRAP法により、全組織マイクロアレイ又はin situハイブリダイゼーションなどの他の方法で検出不能な、その細胞タイプで富化されたmRNA/遺伝子の5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、及び50%をさえ超える特定が可能になる。
本明細書中で提供される方法は、任意の細胞、組織、又は生物、並びに任意の疾患又は障害に応用可能である。幾つかの疾患は、単に「メルクマニュアル」(2006年)と呼ばれることが多い「メルクマニュアル 診断と治療」に引用されているが、それに見出されるものに限定されない。疾患及び障害は、中枢神経系障害、末梢神経系障害、及び非神経系障害であり得る。
1つの実施形態では、本発明は、目的の細胞タイプの翻訳プロファイルを取得する方法を提供する。この方法は、目的の細胞タイプで発現される遺伝子に特異的な調節配列の制御下でタグ化リボソームタンパク質を発現させることと、リボソームタンパク質と複合体化したmRNAを細胞から単離することと、mRNAを特定して、それにより目的の細胞タイプの翻訳プロファイルを取得することとを含む。
a)薬理学的:例えば、小分子アンタゴニスト又はアゴニストなどの候補作用剤の投与;動物モデル又は細胞培養物にMPTP又はOHDAを投与してパーキンソン病様状態を誘導するなど、疾患を再現する(recapitulate)薬理学的作用剤の投与;又は乱用薬物若しくは乱用物質、例えばコカイン又はアルコールの投与;
b)遺伝子的:例えば、運動失調症、パーキンソン病、アルツハイマー病、及び自閉症スペクトラム障害などの疾患又は障害の動物又は細胞モデルを再現するための、生殖細胞系若しくは非生殖細胞系変異又は導入遺伝子の導入;
c)機械的:例えば、外科処置;及び/又は
d)環境的:例えば、住居環境の変化、気候の変化、昼夜周期の逆転;例えば、うつ病様表現型の異常を再現するための、当技術分野において承認されている慢性軽度ストレスプロトコールの誘導。候補作用剤の例は、これらに限定的されないが、小分子、抗体、ハイブリッド抗体、抗体断片、siRNA、アンチセンスRNA、アプタマー、タンパク質、又はペプチドである。例示的な実施形態では、細胞は、ニューロン細胞又はグリア細胞、線条体細胞、小脳細胞、海馬細胞、視床下部細胞、皮質細胞、ドーパミン作動性細胞、脊髄細胞などの神経系の細胞である。他の実施形態では、細胞は、ドーパミン作動性ニューロン又は中型星状神経細胞などのニューロンである。
本発明の1つの実施形態は、本明細書中に記載の方法を使用して特定の疾患又は障害についてスクリーニングされたか、それらを有する疑いがあるか、又はそれらを呈している被験体から採取された組織又は細胞タイプの翻訳プロファイル及び分子表現型を確立することである。この態様では、特定の疾患又は障害に関連する及び/又はそれらを示すマーカーが特定される。1つの実施形態では、生検と同様の様式で、被験体の組織を試料用に取り出すことができる。別の実施形態では、脳脊髄液(CSF)の試料が被験体から取得されることになる。他の実施形態では、任意の体液を被験体から取得することができる。所望の組織又は液体を分離した後、分子タグ化リボソームタンパク質を、細胞タイプ特異的な発現に必要な調節エレメントを用いて誘導する。翻訳プロファイル及び分子表現型は、本明細書中に記載の方法を使用して確立する。その後、その結果生じたプロファイル及び表現型を、特定の疾患又は障害を有していないか又は呈していない被験体(複数可)、つまり参照細胞、参照組織、又は参照被験体から前記方法を使用して取得したプロファイル及び表現型と比較する。その結果は、疾患又は障害に関する診断、予後予測、セラノスティクスの目的に使用することができる。検出、診断、予後予測、又はセラノスティクスされる疾患又は障害は、本明細書中に記載の任意の疾患であってもよく、又は以前に述記されていない疾患及び障害であってもよい。
本発明の別の実施形態は、所望の調節(アンタゴニスト的、アゴニスト的、相乗効果的な調節)活性の調節のための候補作用剤についてスクリーニングをすることである。ある実施形態では、ビヒクル又は候補作用剤を、単回用量で又は反復用量で細胞タイプ又は被験体のいずれかに投与する。投与後、本明細書中に記載の方法に基づいて、翻訳プロファイルを目的の細胞タイプについて確立する。候補作用剤を投与したものに由来するプロファイル及び表現型を、ビヒクル(つまり参照試料)を投与したものに由来するプロファイル及び表現型と比較及び関連付ける。候補作用剤が、目的の細胞タイプから単離された1つ又は複数のmRNAの翻訳及び表現型を調節するかどうかを決定し、それにより翻訳調節に対し前記候補作用剤をスクリーニングする。幾つかの実施形態では、候補作用剤は、候補治療薬又は候補薬物であってもよい。他の実施形態では、候補作用剤は毒素であってもよい。幾つかの実施形態では、候補作用剤は、これらに限定されないが、小分子、抗体、ハイブリッド抗体若しくは抗体断片、siRNA、アンチセンスRNA、アプタマー、タンパク質治療薬、又はペプチドであってよい。
本発明の別の態様は、疾患又は障害に対する候補の治療標的を特定することである。ある実施形態では、これには、細胞を形質転換すること又は分子タグ化リボソームタンパク質を発現する生物を作製すること、及び細胞又は生物を異常(perturbation)又は刺激に曝露することが伴うだろう。選択的に下方制御又は上方制御されるmRNA転写物は、異常を改善するための潜在的な標的であろう。他の実施形態では、疾患又は障害を有する被験体に由来する細胞又は異常をきたした細胞などからの翻訳プロファイルを、他の正常な又は異常をきたしていない細胞と比較することになる。翻訳プロファイルの差異により、潜在的な治療標的の特定が可能になる。
1つの実施形態では、その必要性のある被験体が治療薬に向いているかどうかを評価するための方法であって、被験体に由来する細胞タイプ、細胞サブタイプ、又は組織の翻訳プロファイルを決定する工程と、翻訳プロファイルが1つ又は複数の治療薬による治療を予測するかどうか決定する工程と、被験体に投与する1つ又は複数の治療薬を特定する工程とを含む方法が提供される。
1つの実施形態では、新規遺伝子の公知の機能又は候補となる機能に関する同時制御された遺伝子セットを特定する方法が提供される。この方法は、特定の機能に関連する遺伝子を発現する複数の細胞タイプの翻訳プロファイルを決定する工程と、翻訳プロファイルを比較してどの追加的遺伝子が同様に制御されるかを決定し、それによりその機能に関与する同時制御された遺伝子セットを特定する工程とを含む。
さらなる態様では、本発明はキットを提供する。ある実施形態では、キットは、疾患、障害、及び/又は薬理学的、遺伝学的、又は環境的操作を示す1つ又は複数のマーカーの存在、非存在、及び/又は存在の差異を決定するための試薬を含有する。疾患は、限定されないが神経変性障害、神経精神障害、神経発達障害であり得る(そのような疾患又は障害に対する感受性を有する疑いのある個体に由来する試料において)。別の実施形態では、疾患又は障害は、癌などの増殖性疾患である。他の実施形態では、キットは、特定の生物学的機能に関して同時制御された遺伝子セットを特定するために使用される。生物学的機能は本明細書中に記載されている。
タンパク質に翻訳されるmRNAは、通常ある時点で、リボソーム又はポリリボソーム複合体(ポリソーム)に結合する。本明細書中に記載のものに限定されないが、リボソームタンパク質に融合された任意のタグにより、結合mRNAの単離が可能になる。大型サブユニットリボソームタンパク質L10aのN末端に融合されたeGFP(以降はeGFP−L10aと呼ぶ)を、この実施例及びその後の実施例に使用したが、使用することができる数十、数百、数千、又はそれより多くのタグ−タンパク質の組み合わせにさえ限定されることは全くない。
ポリソームの迅速な免疫親和性精製を、擬似形質移入細胞ではなく、eGFP−L10a導入遺伝子で一過性に形質移入されたHEK293T細胞から達成した。eGFP−L10aで形質移入したHEK293T細胞を、溶解緩衝液中で均質化した。可溶化及び清澄化した溶解産物を、線形密度(20〜50%重量/重量)勾配のスクロースに負荷し、Beckman社製SW41ローターを使用して、40,000r.p.m.(200,000×g)で2時間4℃で遠心分離した。254nmの吸光度をISCO社製UA−6UV検出器でモニターしながら、750μl画分を収集した。
イムノブロッティングの標準的方法を使用した。抗体を以下のように使用した:GFP検出:JL−8、Clontech社製(マウンテンビュー、米国カリフォルニア州)、5%脱脂乳/PBST(リン酸塩緩衝食塩水−0.05%ツイーン20)で1:2,000;Rpl7検出:NB200−308、Novus Biologicals社製(リトルトン、米国コロラド州)、5%無IgGウシ血清アルブミン/PBS−Tで1:2,000;Rpl10a検出:H00004736−M01、Abnova Corporation社製(台北市、台湾)、5%無IgGウシ血清アルブミン/PBS−Tで1:2,000;フェリチン検出:65077、MP Biomedicals社製(ソロン、米国オハイオ州)、0.2%I−ブロック(Applied Biosystems社製、フォスターシティ、米国カリフォルニア州)/PBS−Tで1:1,500;β−アクチン検出:Ab8224、Abcam社製(ケンブリッジ、米国マサチューセッツ州)、5%脱脂乳/PBS−Tで1:2,500。
1)概観
BACアレイデータの比較解析は、複雑な生体系に対する重要な機構の洞察を提供することができる。BACアレイ翻訳プロファイリングは、遺伝学的に定義済の細胞集団で翻訳されたmRNA、及び生理学的な異常に対するそれらの応答に関する包括的な研究を可能にする。この手法の普遍性を確立するために、24種の異なる多様なCNS細胞集団のBACアレイ翻訳プロファイルを本明細書中に提示する。全組織マイクロアレイ研究において以前には特定されなかった、細胞特異的に富化された転写物の特定を、これら大型データセットの比較解析の付加価値を例示するための例として提供する。BACトランスジェニック戦略は、CNSの形態学的に定義済の特異的な細胞の遺伝学的研究の設計用の高解像度の解剖学的データ及びBACベクター(Gong et al., 2003)(www.gensat.org)を提供するために応用されている(Heintz, 2004; Yang et al., 1997)。Heimanらは、任意の遺伝学的に定義済の細胞集団で合成されるタンパク質の補足物の発見に使用するためのBACアレイ翻訳プロファイリング法の開発を報告している。本明細書中では、本方法を使用して、哺乳類脳の多種多様な解剖学的及び遺伝学的に定義済の細胞タイプのBACアレイトランスジェニックマウスを生成する。幾つかの実施形態では、そのようなコレクションは、指定した発生段階のCNS細胞タイプ、及び多種多様な薬学的、遺伝学的、又は行動的変化に応答したCNS細胞タイプの詳細な分子表現型解析を可能にすることになる資源を提供することができる。提示されているマウス及びデータは、BACアレイ手法の普遍性を確認し、哺乳類脳の細胞多様性の分子的基盤に関する研究用の資源を提供する。
翻訳中リボソーム親和性精製(TRAP)法の普遍的な応用可能性を確認し、この手法により複数の細胞タイプに渡って取得することができる情報の深さに関する初期データを取得するために、遺伝子発現神経系地図(GENSAT、Gene Expression Nervous System Atlas)プロジェクト(Gong et al, 2003;S. Falcon, R. Gentleman, Bioinformatics 23, 257−8 (2007);両方ともそれらの全体が組み込まれる)により報告されているBACを選択して、CNS全体にわたって、異なる構造に由来する広範囲のニューロン及びグリアを特異的に標的として選択した。
定義済のCNS細胞集団に対して遺伝学的に標的としてeGFP−L10a融合タンパク質をin vivoで発現させるために、BACトランスジェニックマウスを作製した(図4は、BACアレイ戦略を表し、図5及び6は、BACベクターの遺伝子操作及びBACを保持するマウスの作製を表す)。マウスの特定細胞タイプのmRNAをタグ化するために、細胞特異的シス及びトランス調節エレメント及び既知の転写ユニットを、本明細書及び(Gong et al. Nature Vol 425, 2003)に記載のように使用した。BACアレイ系統に由来する大脳皮質(図7)又は視床下部(図8)の異なる細胞サブセットで特異的発現を示すマウス系統を、例として提示する。選択したBACアレイトランスジェニックマウス系統の詳細な解剖学的特徴付けを下記に提示する。
BACアレイトランスジェニックマウス系統に関する詳細な解剖学的研究を、図9に提示されているように実施した。各系統について、導入遺伝子発現を、eGFPに対する抗体を使用して免疫組織化学法(IHC)によりアッセイした。全脳の連続冠状切片からIHCデータを収集し、高解像度で走査し、検査するために顕微鏡標本にした。染色強度の見かけ上の差が導入遺伝子発現レベルの差を正確に反映するように、切片を全て等しく処理した(Neuroscience Associates社)。この図は、マイクロアレイ解析用に選択した24種の細胞集団の各々のサムネイル画像、及びeGFPL10a発現のIHC解析から明らかになった形態を例示する高解像度データを示す。この特徴付けに包含されている領域には、小脳(パネル1〜9)、脊髄(10)、基底前脳及び線条体(11〜14)、脳幹(15)、並びに大脳皮質(16〜25)が含まれる。
BAC改変、遺伝子導入、及び動物の飼育:
表4は、記載されているように改変して、eGFP−L10a融合タンパク質を駆動系遺伝子の翻訳開始部位に挿入した。創始体及びその後の世代は、Swiss−Websterマウス又はc57bl/6野生型マウスのいずれかで繁殖させた。系統をトランスヘテロ接合体として維持した。
蛍光免疫組織化学の場合は、固定した脳を、リン酸塩緩衝食塩水(PBS)中30%スクロースで寒冷保護して凍結し、40ミクロンで切断して順次低温槽に浮遊させ、使用まで0.1%アジ化ナトリウムを含むPBS中に4℃で保管した。切片を、5%正常ロバ血清、0.25%トリトンを有するPBSで30分間ブロックし、その後一次抗体と共に終夜インキュベートした(表5)。切片をPBSで洗浄し、適切なAlexa色素結合二次抗体((Molecular Probes/Invitrogen社製、カールズバッド、米国カリフォルニア州)と90分間接触させ、洗浄し、顕微鏡標本を作製した。画像は全て、Zeiss社製倒立型LSM510レーザー走査型共焦点顕微鏡でZの厚みを2ミクロンにして取得した。切片全体のZスタックを取得して共局在を確認した。
eGFPタグ化機能的ポリゾーム複合体をin vivoのインタクトな脳組織から迅速に抽出及び免疫親和性精製するための改良手順を開発及び至適化した(A. Alexa, J. Rahnenfuhrer, T. Lengauer, Bioinformatics 22, 1600−7 (2006))。高度に精製されたRNA及びタンパク質を、BACアレイマウスから一貫して取得した。精製プロトコールの重要な工程には、対象の組織を迅速に手作業で解剖及びホモジナイズする工程と、溶解緩衝液にマグネシウム及びシクロヘキシミドを含ませて、精製中にmRNA上のリボソームサブユニットを維持する工程と、内因性RNase活性を阻害する工程と、非変性条件下で粗小胞体結合ポリソームを可溶化する工程と、高親和性抗eGFP抗体を使用する工程と、免疫親和性精製後に高塩濃度での洗浄を加えてバックグラウンドを低減する工程とが含まれていた。図13は、(a)では、D1 BACアレイ動物に由来するが野生型同腹子には由来しないeGFPタグ化L10aの精製及び非タグ化リボソームタンパク質L7の共精製を表示している(D1、D1 BACアレイマウス由来の試料;WT、野生型同腹子由来の試料;In、1%投入試料;UB、1%未結合試料;IP、6.5%免疫親和性精製試料)。eGFP−L10aシグナルは、IP試料がIn及びUBと比べてより高濃度であったため、D1 IPレーンにのみ存在する。(b)では、バイオアナライザーPicoChips(Agilent Technologies社製)で検出した、D1 BACアレイトランスジェニック動物(上段パネル)に由来するが野生型同腹子(下段パネル)には由来しない18S及び28S rRNAの精製が示されている。28S rRNAは約47秒で検出され(run)、18S rRNAは約43秒で検出され、マーカーピークは約23秒で検出される。
後述の実施例に記載されているヤギ抗eGFPを使用した、Drd1及びDrd2系統を除く全ての免疫沈降は、メモリアル−スローン−ケタリング癌センターのモノクローナル抗体コア施設(Monoclonal Antibody Core Facility at Memorial Sloan−Kettering cancer center)で本目的用に特別に産生された2つのモノクローナル抗eGFP抗体(クローン19C8及び19F7)を使用して実施した。マウスを精製GST−eGFP融合タンパク質で免疫し、数ラウンドのスクリーニングを実施して、免疫沈降アッセイで十分に機能したクローンを特定した。最初に、一過性に形質移入した293T細胞から精製したeGFPでコーティングした96ウェルプレートを使用して、モノクローナル上清をELISAにより試験した。次に、形質移入した293T細胞から精製したeGFPを再び使用して、陽性クローンを免疫沈降アッセイでスクリーニングした。最後に、目的のBAC駆動系下でeGFPを発現するトランスジェニックマウス系統に由来する溶解産物からeGFPを強力に免疫沈降させた陽性クローンを特定した。
ポリゾームの免疫沈降及びmRNAの単離を、ヤギ抗eGFP抗体が2つのモノクローナルeGFP抗体(19C8、19F7)の混合物に置換された以外は下記に詳述されているように行った。各反復試料につき3〜6匹のマウスをCO2で安楽死させ、異なる脳領域(小脳、皮質、線条体、基底前脳、脳幹、又は脊髄)を解剖した。各細胞集団を三重反復でアッセイした。RNAの品質管理、増幅、及びハイブリダイゼーションは、Heimanらにより記載されているように行った。複数の細胞タイプに渡って一貫性を保つために、各試料につき15ngの全RNAを増幅した。
1)mRNAの調製
mRNAを精製するため、マウスを断頭し、マウス脳から目的の特定組織を素早く解剖した。プールした組織を直ちに氷冷解剖緩衝液に収集し、モーター駆動テフロン(登録商標)−ガラスホモジナイザーを使用して、氷冷ポリソーム抽出緩衝液(10mM HEPES[pH7.4]、150mM KCl、5mM MgCl2、0.5mMジチオトレイトール、100μg/mlシクロヘキシミド、プロテアーゼ阻害剤、及び組換えRNase阻害剤)中で均質化した。ホモジネートを2,000×g、4℃で10分間遠心分離して、大きな細胞残屑をペレットにし、NP−40又はIGEPAL(EMD Biosciences社製、サンディエゴ、米国カリフォルニア州;Sigma社製、セントルイス、米国ミズーリ州)及びDHPC(Avanti Polar Lipids社製、アラバスター、米国アラバマ州)を、それぞれ1%及び30mMの終濃度で上清に添加した。5分間氷上でインキュベーションした後、清澄化した溶解産物を13,000×gで10分間遠心分離して不溶性物質をペレットにした。ヤギ抗GFP(カスタム仕様)をコーティングしたプロテインG Dynal磁気ビーズ(Invitrogen Corporation製、カールズバッド、米国カリフォルニア州)を上清に添加し、その混合物を転倒式回転(end−over−end rotation)させて30分間4℃でインキュベートした。その後ビーズを磁気ラックに収集し、高塩濃度ポリソーム洗浄緩衝液(10mM HEPES[pH7.4]、350mM KCl、5mM MgCl2、1%NP−40、0.5mMジチオトレイトール、100μg/mlシクロヘキシミド)で3回洗浄し、直ちにTriZol−LS試薬(Invitrogen Corporation社製、カールズバッド、米国カリフォルニア州)及びクロロホルムに浸けて、ポリソームから結合rRNA及びmRNAを抽出した。抽出した後、RNAを、イソプロパノール中の酢酸ナトリウム及びGlycoblue(Ambion社製、オースティン、米国テキサス州)を用いて−80℃で終夜沈殿させ、70%エタノールで2回洗浄し、水に再懸濁し、Rneasyマイクロキット(Qiagen社製、バレンシア、米国カリフォルニア州)を使用してさらに精製し、DNaseでカラム内消化した。rRNAレベル及び完全性により反映されるようなmRNAの量及び品質を評価するために、精製した試料を、バイオアナライザー(Agilent Technologies社製、サンタクララ、米国カリフォルニア州)を使用して分析した。
これらの基準が満たされた後、各試料に由来する合計15ngのRNAを、Affymetrix社製2サイクル増幅キット(Affymetrix社製、サンタクララ、米国カリフォルニア州)で、増幅し、ビオチン化し、及び断片化した。増幅した後、Nanodrop分光光度計で試料を再び定量化し、20μgの増幅RNAをAffymetrix社のプロトコールに従って断片化した。増幅及び断片化した試料をバイオアナライザーで分析した後、Affymetrix社製マウス430 2.0マイクロアレイにハイブリダイゼーションさせた。ハイブリダイゼーションは全て、ロックフェラー大学ゲノムアレイセンター(Rockefeller University Genome Array Center)の標準的Affymetrix社プロトコールにより行った。
MIAME対応生データは、APNRRサーバー及びGEOから入手可能である。反復アレイ試料を、分位数正規化(quantile normalization)で標準化した(GCRMA)。データをフィルタリングし、低シグナル(<50)を示すプローブセット並びにモノクローナルバックグラウンドであると特定されたプローブセット(表7)を解析から除外し、反復試料を平均した。
H=−ΣPi log2 Pi
i=1
全試料に渡って最高及び最低エントロピーを有するプローブセットの10%を、cytoscapeソフウェアのBINGOプラグインを使用し、完全マウスジーンオントロジー、Benjamin Hochberg FDR多重検定補正を用いた超幾何検定(hypergeometic test)(Ashburner et al., 2000; Maere et al., 2005)でのp=.01の閾値を使用して解析した。この解析の結果は、ジーンオントロジー及びEASE統計のEASEオンライン実装を使用して取得されたものと実質的に類似する(Dennis et al., 2003)。
1)概観
合計で、5つの領域の24種の細胞集団を、Heimanら(2008年)の翻訳中リボソーム親和性精製(TRAP)法を使用する免疫沈降(IP)によるアッセイ及びマイクロアレイによるゲノム全域翻訳プロファイル用に選択した。各細胞タイプについて、3〜6匹のトランスジェニックマウスに由来する顕微解剖したプール組織を使用した。図16に示されているように、この手順により、細胞特異的mRNAと共にeGFP−リボソーム融合タンパク質の精製がもたらされた。最初のIPからの全RNAの収量は、組織中の標識細胞数及び各細胞内の導入遺伝子発現の強度に依存し、RNA回収量は、1IP当たり数十から数千ナノグラムに及ぶ。免疫沈降の未結合(UB)画分に由来するRNAを回収して、解剖領域全体で発現された遺伝子を測定した。その後、IP及びUB mRNAを、標準的プロトコールを使用して標識cRNAへと増幅した。
幾つかの実験では、20ngの精製RNAを使用し、NuGEN社製WT Ovationキット(NuGEN Technologies社製、サンカルロス、米国カリフォルニア州)を用いてcDNAを生成し、その結果生じたcDNAを精製及び定量した。10ngのcDNAを、各リアルタイム遺伝子発現アッセイに使用した。製造業者の説明書に従って、Applied Biosystems社製7900型配列検出システムを使用して、Applied Biosystems社(フォスターシティ、米国カリフォルニア州)のTaqManプレデザイン遺伝子発現アッセイを使用した。
上記の実施例は、BACアレイデータが各細胞タイプの既知の陽性対照及び陰性対照の発現を正確に反映しており、これらの結果を独立した実験解析により確認することができることを示している。この実施例は、この大規模マイクロアレイデータセットの比較解析から推論することができる、これらの細胞の広範な特性を例示する。この解析の結果は図19に示されている。パネルAに示されているように、最も高い変動係数を有するプローブセットの20%を使用して、24個のIP試料及び6個のUB試料全てのGCRMA正規化データの階層的クラスター化を実施した。この教師なしクラスター化は、CNS細胞タイプの既知の生物学を本質的に再現する。したがって、皮質投射ニューロンの3つの集団は、皮質介在ニューロン、プルキンエ細胞、又は運動ニューロンに類似するよりも、互いにより類似している。脳の異なる領域から収集したアストログリアBACアレイデータは、予想通り、乏突起膠細胞に類似するよりも、互いに及びベルクマングリアにより類似している。乏突起膠細胞は、任意のニューロン集団などに類似するより、互いにより類似している。これらの知見は、類似した遺伝子発現パターンを有する細胞は類似の機能を共有するという概念を支持し、BACアレイデータの解析が、各細胞タイプの際立った特徴に関与するそれらの遺伝子産物の特定を可能にすることを示唆する。
表9は、個々の細胞タイプの高度に特化した特性をコードし得る同時制御された遺伝子を特定するための翻訳プロファイリングの比較解析である。この解析は、同時制御された遺伝子のこれらのコホートが、多くの場合周知の機能を有する遺伝子を含むことになるため、新規遺伝子産物の公知の機能又は候補となる機能に関する遺伝子セットを特定しようとする際に有用であり得る。提供されたBACアレイデータが、このようなクエリーで生産的な結果をもたらすことができるかどうかを試験するために、髄鞘形成に関与することが知られている遺伝子、ミエリン塩基性タンパク質(Mbp)のプローブセットを選択した。その最も高い相関物を、全IP及びUB試料に渡って調査した。Mbp発現と相関する上位35の遺伝子(最小相関係数:.86)では、Plp1、Cnp、Mog、Mal、及びMobpを含む、髄鞘形成に関与することも知られている6つの遺伝子が特定され、別の3つの遺伝子は、ミエリン構成要素のプロテオミクススクリーニングで以前に特定されていた(表9)。
脊髄運動ニューロン(MN)は、様々な深刻な神経学的障害及び深刻な急性傷害に関与するため、最もよく研究されているCNSの細胞タイプの1つである。そのため、それらは、この細胞タイプについて入手可能な深い知識を用いてBACアレイデータを評価する機会を提供する。特に、MNについて入手可能である豊富な解剖学的及び生理学的データ、及びそれらの発生に関与する転写因子の包括的な研究により、本明細書中で提示されているBACアレイデータを公開文献と比較することが可能になる。図22に示されているように、単一のBACアレイ実験で、先行研究に記載されているMNで発現される分子のほとんどが再発見される。この解析を実施するために、BACアレイの結果を、本方法に記載のように「発現した」、「富化した」、又は「発現なし」と色分けした。その後、この分類を、成体げっ歯動物文献で報告されている結果と比較し、単に「発現した」又は「発現なし」のいずれかに色わけするか、又は研究データがない場合若しくは矛盾するデータが存在する場合は色付けせずにしておいた。マイクロアレイプローブセットが存在し情報価値があったほとんどの場合で、BACアレイの結果は、文献とよく一致する。したがって、MNは、AMPA、カイニン酸、及びNMDAに感受性であるグルタミン酸受容体を発現することが報告されている(Rekling et al., 2000)。これらの結果は、これらの応答を媒介する特異的受容体サブユニットには、Gria3及び4、Grik2及び4、並びにGrin1、3a、及び3bが含まれることを示唆する。MNの阻害は、Glrα2及びGlrBグリシン受容体サブユニット、並びに潜在的にGabrα2、α5、及びβ3サブユニットからなる代謝調節型(Gabbr1)及びイオンチャネル型の両方のGABA作動性受容体の作用によるはずである。これらのデータにより、MNが、Chrnα4/β2及び/又はChrnα7受容体を介するアセチルコリン、並びにHtr1d受容体を介するセロトニンを含む全ての古典的神経伝達物質に応答するはずであると予測される。MNにおけるDrd1又はDrd2の発現は検出されず、従来の免疫組織化学の知見(Rekling et al., 2000)とは一致しなかった。さらに、Drd1及びDrd2のトランスジェニックマウスは、MNで導入遺伝子の発現を示さず、Allen脳地図ISHも、脳幹MNでの発現を示しておらず、BACアレイの結果を支持している。
BACアレイ技術を他のタイプのニューロンの特徴付けに使用することができるかどうかを決定するために、コリン作動性細胞特異的BACアレイ系統及びプルキンエ細胞特異的BACアレイ系統を、図23に示されているように生成した。コリン作動性細胞BACアレイ系統を、CNSにおけるコリン作動性細胞で特異的に発現されるコリンアセチルトランスフェラーゼ(Chat)遺伝子座の制御下にeGFP−L10a導入遺伝子を配置することにより生成した。公開されているラットCNSでのChat発現パターン(Oh et al., 1992)から予想される通り、ChatBACアレイ系統DW167は、背側線条体及び腹側線条体(側座核、嗅結節、及びカレハ島)、基底前脳、脳幹、脊髄、及び内側手綱のコリン作動性細胞で最も高いeGFP−L10a発現を示した(パネルa)。eGFP発現は、脳幹の運動ニューロン(パネルb)を含むこれらの構造の全てのコリン作動性細胞に限定されることが、Chatの間接免疫蛍光染色により示された。この共局在化の1つの例外は、脚橋被蓋核及び外背側被蓋核にあり、そこでは少数のコリン作動性細胞のみがeGFPで標識されていた。
実施例10 線条体の分子表現型解析及び翻訳プロファイリング
1)概観
この例は、線条体の特異的特性に関する研究を表す。この例では、密接に関連しており空間的に隣接するCNS細胞集団での予期せぬ分子及び生理学的複雑さを明らかにすることができる1つの実施形態が例示されている。線条体とは、終脳の皮質下の部分である。線条体は、基底核系の主要な投入部位である。この例では、線条体の線条体黒質及び線条体淡蒼球細胞に分子タグ化リボソームタンパク質を含有するトランスジェニックマウスを、標準的BACアレイ技術を使用して作製した。線条体黒質及び線条体淡蒼球中型星状神経細胞(MSN)は混合されており、細胞体樹状突起の(somato−dendritic)形態では識別不能であり、パーキンソン病、統合失調症、注意欠陥過活動性障害、薬物依存症、及びハンチントン病を含む種々の神経系疾患の病因において役割を果たしているため、多大な関心の対象である。線条体黒質MSNは、基底核、つまり黒質及び淡蒼球の内部セグメント(げっ歯動物の脳脚内核)の出力核に直接投射軸索(projection axon)を送るが、線条体淡蒼球MSNは、淡蒼球の外部セグメントに投射軸索を送る。線条体黒質MSNは、ドーパミンD1受容体(Drd1;Drd1a)及び神経ペプチドのサブスタンスP(Tac1)、及びダイノルフィン(Pdyn)を優先的に発現することが知られているが、線条体淡蒼球MSNは、ドーパミンD2受容体(Drd2)、アデノシンA2a受容体(Adora2a)、及び神経ペプチドのエンケファリン(Penk)を優先的に発現する(S. Gong et al., Nature 425, 917−25 (2003))。
線条体の線条体黒質及び線条体淡蒼球細胞に分子タグ化リボソームタンパク質を含有するマウスを作製した。細菌での相同組換えを使用して、適切なBACのD2受容体(線条体淡蒼球)又はD1受容体(線条体黒質)遺伝子座のいずれかの制御下にeGFP−L10aを配置した。遺伝子操作したBACアレイDNA構築体を受精卵母細胞に前核注入することにより、マウス系統を生成した。
以前に知られている全てのマーカーを含む、線条体黒質及び線条体淡蒼球MSNを特徴付ける差次的に発現される複数の遺伝子を特定することができる。翻訳プロファイリング及び分子表現型解析を、成体線条体黒質又は線条体淡蒼球BACアレイマウスから免疫親和性精製したmRNAを用いて実施した。in vitro転写を2回行った後、ビオチン標識アンチセンスRNA(cRNA)を使用して、Affymetrix社製GeneChipマウスゲノム430 2.0アレイで照合した。各細胞タイプについて、各々が7匹の動物コホートから調製された3つの独立した生物学的反復試料からデータを収集した。免疫親和性精製した試料の解析により、mRNAの長さ又は存在量にバイアスがかかっていないことが明らかになった(図27)。転写産物の長さは、入手可能なマウスの管理されたRefSeqRNA配列全てに基づいた(ftp://ftp.ncbi.nih.gov/genomes/M_musculus/RNA)。単一遺伝子の転写改変体が複数入手可能だった場合、最長の転写改変体を選択した。RefSeqの長さを、D1(a)又はD2(b)BACアレイIP正規化発現値に対してプロットした。転写産物の長さとIP値との間に相関性は観察されなかった。Affymetrix社製Genechipプローブセット全てについての線条体発現値を、野生型線条体組織に由来する全RNAアレイにより取得した(データ非表示)。これらの値を、(c)D1 BACアレイ又は(d)D2 BACアレイのIP正規化値に対してプロットした。予想通り、線条体全体でのより高い発現は(IP、野生型マウスでは無し)、より高いD1又はD2 BACアレイIP値と相関する。線条体全体で中程度の発現を示したがIP値は低かった少数の遺伝子には、公知の非ニューロン遺伝子が含まれている。
公的に入手可能な遺伝子発現データベースを使用してデータの大規模検証を実施した。D1及びD2 BACアレイ実験からのデータをプールしてMSNで富化されたサブタイプを代表させ、1つの脳全体(線条体を除く)の全RNAから収集したデータと比較した(表13)。
線条体黒質及び線条体淡蒼球で富化された遺伝子を生物学的機能によりグループ化するために、これらの遺伝子に関連した統計的に過剰出現するジーンオントロジー(GO)及び京都遺伝子およびゲノム百科事典(KEGG)の経路用語を検索した。GO用語は、既知の分子機能、生物学的プロセス、並びに特定遺伝子の細胞局在化(構成要素)(R. Bernardi, P. P. Pandolfi, Nat Rev Mol Cell Biol 8, 1006 (2007))を記述する一方で、KEGG経路は既知の分子相互作用及び反応ネットワークを要約する。最も富化された線条体黒質KEGG経路には、神経活動性(neuroactive)リガンド受容体相互作用、長期抑制、及びMAPKシグナル伝達経路が含まれていた。最も富化された線条体淡蒼球KEGG経路には、ピリミジン代謝、プリン代謝、及び神経活動性リガンド受容体相互作用が含まれていた。線条体黒質及び線条体淡蒼球細胞データを脳全体と比較することにより、MAPKシグナル伝達経路、長期増強、及びインスリンシグナル伝達経路を含む多数の線条体で富化されたKEGG経路が明らかになった。線条体黒質で富化されたGO分子機能用語には、GTPアーゼ活性、カルシウムイオン結合、及びレチナール結合が含まれており、線条体淡蒼球で富化されたGO分子機能用語には、アドレナリン作用性受容体活性、カルシウムチャネル活性、及びロドプシン様受容体活性が含まれており、線条体で富化されたGO用語には、亜鉛イオン結合、タンパク質セリン/トレオニンキナーゼ活性、及びユビキチンタンパク質リガーゼ活性が含まれていた。
上記の実施例で発見された差次的に翻訳されたmRNAにより、線条体黒質細胞と線条体淡蒼球細胞との間の生理学的差異が直ちに予測される。例えば、線条体淡蒼球ニューロンで選択的で富化されたmRNAは、Gpr6である(S. Gong et al., Nature 425, 917−25 (Oct 30, 2003))。Gpr6は、リゾリン脂質スフィンゴシン1−リン酸塩(S1P)のGタンパク質共役受容体をコードする(A. Ignatov, J. Lintzel, H. J. Kreienkamp, H. C. Schaller, Biochem Biophys Res Commun 311, 329−36 (Nov 14, 2003))。異種性発現系では、Gpr6受容体のS1P活性化は、細胞内貯蔵からのCa2+放出を誘導する。細胞内Ca2+は神経生理学の重要な調節因子であるため、線条体淡蒼球ニューロンでGpr6が選択的に富化されることが、S1Pに対する差次的応答と相関するかどうかを調査した。機能的Gpr6受容体が、線条体淡蒼球ニューロンで選択的に発現されたかどうかを決定するために、BAC D2線条体淡蒼球中型星状神経細胞又はBAC D1線条体黒質中型星状神経細胞(可溶性eGFPを発現する)を、脳切片及びパッチクランプで特定した(M. Day et al., Nat Neurosci 9, 251−9 (Feb, 2006))。ニューロンを、Alexa594(50μM)と共に負荷して樹状突起の視覚化を可能にし、Fluo−4(200μM)と共に負荷して、細胞内Ca2+濃度を二光子レーザー走査型顕微鏡(2PLSM)を使用してモニターすることを可能にした。色素を平衡化させた後、ニューロンを画像化し、S1P(10μM)を含有する第2のピペットを、細胞体から60〜80ミクロンと、樹状突起に対して物理的に非常に接近させた(aおよびb)。体細胞性膜電位を−70mVで固定してS1Pに限局的に印加すると、BAC D2線条体淡蒼球ニューロンの樹状突起Ca2+レベルは、一貫して及び可逆的に増加したが(クラスカル−ワリスANOVA、p<0.01、n=6)、BAC D1線条体黒質ニューロンでは増加しなかった(クラスカル−ワリスANOVA、p>0.01、n=4)。Ca2+ATPアーゼ阻害剤タプシガルジン(10μM)による細胞内Ca2+貯蔵の枯渇は、BAC D2線条体淡蒼球ニューロンでのS1Pに対する応答を消失させ(クラスカル−ワリスANOVA、p>0.01、n=4;c及びd)、Gpr6受容体が細胞内Ca2+貯蔵を動員することを示す以前の研究と一致した(D. S. Lim et al., Nature 404, 613 (2000))。線条体淡蒼球細胞で見られる細胞質ゾルCa2+のGpr6依存性上昇は、その結果として、Ca2+及びカルモジュリン依存性ホスファターゼであるカルシニューリンの活性化(A. Nishi, G. L. Snyder, A. C. Nairn, P. Greengard, J Neurochem 72, 2015−21 (May, 1999))及び/又はアデニリルシクラーゼ5型(AC5;Adcy5)の阻害(C. E. Glatt, S. H. Snyder, Nature 361, 536−8 (Feb 11, 1993);Y. Ishikawa et al., J Biol Chem 267, 13553−7 (Jul 5, 1992))により、中枢的に重要な調節タンパク質DARPP−32の34位トレオニンのリン酸化の減少をもたらすことが予測されるだろう。これは、DARPP−32のリン酸化状態を測定することにより、S1P誘導性の細胞質ゾルCa2+増加の生理学的帰結を実証した。34位トレオニンでのDARPP−32リン酸化の減少は、線条体切片のS1P処理の5分後に見られ(0分では1.04±0.17正規化ユニット;S1P添加の5分後では0.58正規化ユニット±0.24、片側マン−ホイットニー検定、p=0.05、n=12)、D2細胞(それらは中型星状神経細胞のおよそ半分を構成する)での細胞質ゾルCa2+上昇と一致した。これらのデータは、BACアレイ翻訳プロファイリングに基づく予測を確認し、スフィンゴシン1−リン酸に対する線条体淡蒼球ニューロンの強力で細胞タイプ特異的な応答を実証し、線条体黒質中型星状神経細胞のではなく線条体淡蒼球中型星状神経細胞の新規で重要なシグナル伝達構成要素として、Gpr6を特定する。
1)概観
ある実施形態では、遺伝的、薬理学的、又は環境的変化に対する応答を、本明細書中に記載の翻訳プロファイリング及び分子表現型解析法を使用して、単一細胞タイプで効率的に解析することができる。線条体ニューロンの明らかにされた新規な生理学的特性を明確にするために、ドーパミン作動性シグナル伝達に薬理学的異常が起きた際の、MSNでのmRNA発現に起こる可能性のある変化を調査した。
実施した品質管理ステップ:各実験につき3回の生物学的反復測定を実施した。その実験の他のアレイ間のスピアマン相関が75%を超えた場合にのみアレイを使用したが、生物学的な変動により調整する場合があった。独立した生物学的供給源及び増幅方法を使用して定量PCR反応を実施し、アレイの結果を検証した。実験には、本明細書中の表14に記載されているように、同じ日に実施した各D1対D2反復測定との5つの比較が含まれていた。
生体試料の由来:7匹の成熟BACアレイマウス(雌4匹、雄3匹)を各反復測定用にプールした。線条体組織を7〜9週齢で採取した。以下のマウス系統を各実験に使用した:(Drd1a/eGFP−L10a)及び(Drd2/eGFP−L10a)。
線条体黒質細胞対線条体淡蒼球細胞のベースライン比較のために、調整両側対応のあるt検定(moderated two−tailed paired t−test)を実施した。調整t検定のp値を多重仮説検定用に調整し、Benjamini−Hochberg手順を使用して偽発見率(FDR)を制御した。その後、0.1(10%)未満のFDR及び1.5より大きな倍数変化を示した遺伝子を選択した。
1)概観
コカインで処置したマウスのD1線条体黒質のGABAA受容体に関連する遺伝子の差次的発現の生理学的重要性を評価するために、マウスを、コカイン又はビヒクル(生理食塩水)で慢性的に処置し、その後GABAA受容体機能を電気生理学的に分析した。
32〜37日齢のBAC D1又はBAC D2可溶性eGFP発現トランスジェニックマウスから、切片を取得した(S. Falcon, R. Gentleman, Bioinformatics 23, 257−8 (2007))。動物は全て、ノースウェスタン大学ACUC及びNIHガイドラインに従って取り扱った。慢性コカイン研究の場合、mRNA研究の場合と同様に、20mg/kgコカイン又は100μl生理食塩水を15日間1日1回マウスに注射し、最終注射の4時間後に脳切片を調製した。線条体を含有する冠状切片を、250μmの厚さに調製した。ケタミン及びキシラジンでマウスに深く麻酔をかけ、酸素化した氷冷人工脳脊髄液(ACSF)で経心的に灌流し、断頭した。脳を迅速に摘出し、Leica VT1000Sビブラトーム(Leica Microsystems社製、ドイツ)を使用して、酸素化した氷冷ACSF中で切片を作製した。ACSFは以下のものを(mMで)含有していた:126 NaCl、3 KCl、2 CaCl2、1 MgCl2、25 NaHCO3、1.25 NaH2PO4、及び15.6 D(+)グルコース。別に記載がない限り、化学物質及び試薬は全てSigma社(セントルイス、米国ミズーリ州)から取得した。切片を保持チャンバーに移動し、そこで切片を35℃で1時間ACSFに完全に浸漬させ、その後細胞全体が測定されるまで室温(22℃〜23℃)で保管した。ACSF溶液は全て、95%O2及び5%CO2で連続的に通気して、酸素化及び約pH7.4を維持し、定期的に検査して約300mOsm/lを保証した。
全細胞電圧固定測定を標準的技術を使用して実施した。個々の切片を、Olympus Optical社製(メルヴィル、米国ニューヨーク州)BX50WI顕微鏡の浸水型測定チャンバーに移し、2〜3ml/分の流速で22℃〜23℃のACSFを用いて連続的に切片の上面に流した。全細胞電圧固定測定を、Olympus社製OLY−150カメラ/コントローラーシステム(Olympus社、日本)を備えた赤外線微分干渉コントラスト(IR−DIC、infrared−differential interference contrast)ビデオ顕微鏡を使用して、切片に検出された線条体中型星状神経細胞に対して実施した。全ての実験において、切片の上面に流す培地に以下のものを添加してmIPSCを分離した:NMDAグルタミン酸受容体をブロックするための50μM 2−アミノ−5−ホスホノペンタン酸(AP−5、Tocris Cookson社製、エリスビル、米国ミズーリ州)、AMPA/カイナイトグルタミン酸受容体をブロックするための5μM 1,2,3,4−テトラヒドロ−6−ニトロ2,3−ジオキソ−ベンゾ2キノキサリン−7−スルホンアミド(NBQX)、及びナトリウムチャネルをブロックするための1μMテトロドトキシン(TTX、Alomone Labs社製、エルサレム、イスラエル)。パッチ電極は、Sutter社製BF150−86−10ガラスを、P−97Flaming/Brownマイクロピペットプラー(Sutter Instrument社製、ノバート、米国カリフォルニア州)で引張することにより作製し、測定前に火炎仕上げした。ピペット抵抗は、以下のものを(mMで)含有する内部溶液を充填した後で、典型的には2.5〜4MΩだった:140 CsCl、1.5 MgCl2、10 HEPES、0.1 BAPTA−Cs、5 QX−314、2 ATP−Na2、0.4 GTP−Na2、pHはCsOHで7.25〜7.3に調整、270〜280mOsm/Lだった。Multiclamp700A増幅器、Digidata1322A型16ビットデータ取得システム、及びpClampソフトウェアバージョン8.2(Molecular Devices社製、ユニオンシティー、米国カリフォルニア州)をギャップフリーモードで用いて、微弱IPSCを測定した。ニューロンを−80mVで電圧固定し、ベースラインを安定させ(約5分間)、その後mIPSCを7分間測定した。Mini Analysis(Synaptosoft Inc.製、フォートリー、米国ニュージャージー州)を使用して、mIPSC振幅、周波数、10〜90%立ち上がり時間、減衰時間、及び非定常ノイズ解析を分析した。二乗平均平方根ベースラインノイズレベルの5倍の閾値(一般的に、約20〜25pA)を、事象検出用に設定した。その後、測定記録を視覚的に検査し、ノイズが引き金となって起きた事象を全て廃棄した。周波数解析を、閾値基準を満たした全てのmIPSCで実施した。その後、以下の基準に従って、振幅、10〜90%立ち上がり時間、及び減衰時間解析について、事象を選択した:1)1msより速い10〜90%立ち上がり時間を示す事象を選択して、空間的電圧固定誤差及び電気フィルタリング(electronic filtering)を最小限にした;2)50msより速い減衰時間を示す事象を選択して、複数事象により正確な減衰時間の測定が妨げられた事象を最小限に抑えた。非定常ノイズ解析のために、振幅及びmIPSC動態と同じ基準を使用し、以下の追加的な基準に従った:3)減衰がベースラインに戻らなかった複数事象がないこと、4)事象は、立ち上がりの前及び減衰の終了後に安定的なベースラインを示さなければならなかった。mIPSC測定の平均値を、Sigma Stat3.0(Systat Software Inc.製、リッチモンド、米国カリフォルニア州)を使用して、t検定又はマン−ホイットニー順位和検定により群間で比較した。プールしたデータは、IGOR5.00(WaveMetrics社製、レークオスウィーゴ、米国オレゴン州)を使用して、平均値±標準誤差及びボックスプロットとして示されている。
275μmの厚さの皮質線条体切片で可溶性eGFP(S. Falcon, R. Gentleman, Bioinformatics 23, 257−8 (2007))を発現する線条体黒質(BAC D1)又は線条体淡蒼球(BAC D2)ニューロンを、体細胞eGFP蛍光により特定した。eGFP 2PLSM緑色シグナル(500〜550nm)を、810nmでの励起を使用してeGFP+BAC Drd2ニューロンから取得した一方で、eGFP+BAC Drd1ニューロンは900nmでの励起を必要とした。その後、Hamamatsu社製C2400型Newviconカメラ/コントローラーシステム(Hamamatsu社製、日本)及び60X/0.9NA水没型レンズを備えた赤外線微分干渉コントラスト(IR−DIC)ビデオ顕微鏡を使用して、eGFP+MSNをパッチした。 パッチ電極は、BF150−86−10ガラスを、P−97Flaming/Brownマイクロピペットプラー(両方ともSutter Instrument Co.製、ノバート、米国カリフォルニア州)で引張することにより作製した。ピペット溶液には、以下のものを(mMで)含有した:135 KMeSO4(ICN Biomedicals Inc.、オローラ、米国オハイオ州)、5 KCl、10 HEPES、2 MgATP、0.2 Na2GTP、及び0.1 スペルミン、KOHによりpH=7.25〜7.3、270mOsm/l。浴中で測定すると、ピペット抵抗は約4MΩだった。直列抵抗が>1GΩの細胞体で電圧固定モードの密閉を形成した。全細胞配置の密閉が破られた後、直列抵抗は10〜15MΩに減少した。樹状突起を視覚化するためにAlexa594(50μM、Ca2+非感受性赤色色素)を、及び細胞内樹状突起におけるCa2+の変化を測定するためにFluo−4(200μM、Ca2+感受性緑色色素)を、内部ピペット溶液に溶解した。eGFP蛍光は、樹状突起での検出用閾値未満であり、カルシウム画像化中のバックグラウンドシグナルに寄与しなかった。幾つかの実験では、タプシガルジンも内部溶液に添加して、ER媒介性Ca2+放出をブロックした。タプシガルジンは、最初は10mMの濃度でDMSOに溶解した。その後、この原液を内部測定液で1000×に希釈した。挿入後、画像化に先立って、内部溶液を少なくとも15分間拡散平衡に近づけた。細胞を−70mVで電圧固定し、体細胞の脱分極をモニターした。
コカイン処置は、以下の図に示されているように、線条体黒質ニューロンのGABAA受容体微弱阻害性シナプス電流(mIPSC)の周波数を増加させた。
1)概観
小脳は、感覚認知及び運動制御の統合に役割を果たす脳の領域である。運動制御を協調させるために、大脳運動皮質(情報を筋肉に送って筋肉を運動させる)及び脊髄小脳路(空間における身体の姿勢について固有受容フィードバックを提供する)と小脳を関連付ける幾つかの神経経路が存在する。小脳は、身体姿勢に関する定期的なフィードバックを使用してこれらの経路を統合して、運動を微調整する(Fine EJ, Ionita CC, Lohr L (2002). "The history of the development of the cerebellar examination". Semin Neurol 22 (4): 375−84. doi:10.1055/s−2002−36759))。研究により、小脳が、注意力並びに言語、音楽、及び他の知覚的な一過性の刺激の処置を含む認知機能などの他の機能にも寄与することが示されている(Rapp, Brenda (2001). The Handbook of Cognitive Neuropsychology: What Deficits Reveal about the Human Mind. Psychology Press, 481)。
複数の細胞層及び幾つかの小脳細胞タイプが存在する。最も内側の顆粒層は、3つの細胞タイプの細胞体、すなわち多数の微小な顆粒細胞、より大型のゴルジ細胞、及び中型のニューロン単極刷毛細胞を含有する。中央のプルキンエ層は、1つのタイプのニューロンであるプルキンエ細胞のみを含有する。プルキンエ細胞は、小脳皮質の一次統合ニューロンであり、小脳皮質の唯一の出力を提供する。放射状の上皮細胞としても知られている一種のグリアであるベルクマングリアは、プルキンエ細胞層に自身の細胞体を有し、分子層に伸張し軟膜表面の球状エンドフィートで終了する突起を有する小脳の星状細胞である(Eccles J.C Ito, M and Szentagothai J. (1967). "The cerebellum as a neuronal machine". Springer Verlag;Llinas, R., Baker, R. and Sotelo, C. (1974). "Electrotonic coupling between neurons in cat inferior olive". J. Neurophysiol 37: 560−571)。小脳皮質の最外層は、2つのタイプの抑制性介在ニューロン、すなわち星状細胞及びかご細胞を含有する。小脳皮質の最外層は、顆粒細胞からのプルキンエニューロン及び平行線維束の樹状突起分岐も含有する。特定の小脳細胞タイプで以下の特異的な発現パターンを示すBACアレイマウスを作製することができる:小脳顆粒細胞を標識する、Neurod1遺伝子座に由来する調節領域の制御下でのタグ化リボソームタンパク質の発現;小脳内部ゴルジニューロンを標識する、Grm2遺伝子座に由来する調節領域の制御下でのタグ化リボソームタンパク質の発現;単極刷毛細胞を標識する、Grp遺伝子座に由来する調節領域の制御下でのタグ化リボソームタンパク質の発現;小脳星状細胞を標識する、Pttg3遺伝子座に由来する調節領域の制御下でのタグ化リボソームタンパク質の発現;及び星状細胞、かご細胞を標識する、Lypd6遺伝子座に由来する調節領域の制御下でのタグ化リボソームタンパク質の発現。
毛細血管拡張性運動失調(AT)は、その原理的特徴が運動失調症、リンパ球腫瘍の発生、及び小脳変性を含む疾患である(P. J. McKinnon, EMBO Rep 5, 772 (2004);F. Gumy−Pause, P. Wacker, A. P. Sappino, Leukemia 18, 238 (2004);L. Farina et al., J Comput Assist Tomogr 18, 724 (1994);F. Tavani et al., Neuroradiology 45, 315 (2003))。ATは、毛細血管拡張性運動失調変異(ATM)をコードする遺伝子、DNA損傷応答及び細胞周期制御に関与する遍在的に発現される核タンパク質キナーゼの劣性機能喪失型変異により引き起こされる(K. Savitsky et al., Science 268, 1749 (1995);R. T. Abraham, Genes Dev 15, 2177 (2001);Y. Shiloh, Nat Rev Cancer 3, 155 (2003);M. F. Lavin, S. Kozlov, Cell Cycle 6, 931 (2007);S. Matsuoka et al., Science 316, 1160 (2007))。Atmノックアウトマウスは、拡延(irradiation)に対する感受性及びリンパ球腫瘍形成を含むヒト障害の多くの特徴を示す(C. Barlow, K. D. Brown, C. X. Deng, D. A. Tagle, A. Wynshaw−Boris, Nat Genet 17, 453 (1997);K. H. Herzog, M. J. Chong, M. Kapsetaki, J. I. Morgan, P. J. McKinnon, Science 280, 1089 (1998);A. Elson et al., Proc Natl Acad Sci U S A 93, 13084 (1996);Y. Xu et al., Genes Dev 10, 2411 (1996); P. R. Borghesani et al., Proc Natl Acad Sci U S A 97, 3336 (2000))。しかしながら、ATの際立った特徴の1つ、小脳プルキンエ細胞の変性は、この疾患のマウスモデルには生じない。AT患者でプルキンエ細胞が実質的に消失したという臨床的証拠は、罹児が数歳に成長するまで見られないため(R. A. Gatti et al., Clin Rev Allergy Immunol 20, 87 (2001))、及びマウスの平均寿命が2歳未満であるため、ATマウスモデルでは、プルキンエ細胞変性がもたらされるのに十分な時間が発症プロセスにないだけである可能性がある。1つの実施形態では、ATのマウスモデルにおける特定の小脳細胞タイプにあるリボソームを、分子的に標識化することができる(Doyle et al.、投稿済)。
その後、Pcp2及びSept4 BACアレイトランスジェニック動物をAtm+/−動物と交配させた。2世代後に、Pcp2及びSept4 BACアレイ構築体を、Atm+/+又はAtm−/−動物で回収することができた。ATM機能の喪失に対する応答がプルキンエ細胞とベルクマングリアとで異なるかどうかを決定するために、マイクロアレイデータを、6〜8週齢のPcp2及びSept4 wt及びAtm−/−BACアレイマウスを使用して、小脳全体、プルキンエ細胞、及びベルクマングリア細胞から収集した。Atm−/−動物で制御された遺伝子のリストを、25より大きな発現値、及びwt動物とAtm−/−動物との間で少なくとも1.5倍の発現差を示す全ての遺伝子を特定することにより生成した。0.05のp値カットオフを用いた一元配置ANOVA解析を使用して有意性について選択した。散布図解析及びベン図解析を使用して、その発現がAtm変異に応答して小脳全体、プルキンエ細胞、又はベルクマングリアで変化した遺伝子を特定した(図37)。個々の遺伝子のデータは表24〜29に示されている。
ノックアウト小脳及び各細胞タイプに富化される遺伝子の機能群を特定するために、DAVID(G. Dennis, Jr. et al., Genome Biol 4, P3 (2003))及びGenespringの両方を使用して、ジーンオントロジー(GO)解析を実施し、各プログラムは本質的に同じ結果をもたらした。GOデータベースが不完全なため、データを完全に解析するためには遺伝子リスト及び適切な文献を比較することも必要だった。Atm−/−動物の小脳全体で富化された遺伝子には、細胞周期制御に関与するもの(Tacc1、Cdkn1a(p21))及びアポトーシスに関与するもの(Cdkn1a(p21))が含まれる。Atm−/−動物に由来するベルクマングリア細胞では、BMP5を含む発生及び細胞分化と関係する遺伝子が富化される。Atm−/−動物に由来するプルキンエ細胞では、クロマチン構成、ヌクレオチド代謝、及び転写制御に関与する遺伝子中が富化される。これらには、Tex12、Zfp191、Rora、Mtf2、及びMjdなどの転写因子、及びCcrn4l及びDdx6などのmRNA代謝に関与する遺伝子が含まれる。これらの差次的に制御された遺伝子の幾つかは、直接的又は間接的に運動失調症に関連している。Roraは、staggererマウス変異体で変異しているレチノイン酸オーファン受容体である((B. A. Hamilton et al., Nature 379, 736 (1996))。Mjd(Atxn3、Sca3)は、マシャド−ジョーゼフ病の原因遺伝子である(Y. Kawaguchi et al., Nat Genet 8, 221 (1994))。Ddx6は、Pボディ、mRNA分解に関与する多タンパク質複合体におけるAtaxin−2に結合することが知られている(U. Nonhoff et al., Mol Biol Cell 18, 1385 (2007);N. Cougot, S. Babajko, B. Seraphin, J Cell Biol 165, 31 (2004))。Ccrn4lは、Pボディにも見出されるデアデニラーゼであり(N. Cougot, S. Babajko, B. Seraphin, J Cell Biol 165, 31 (2004));脱アデニル化は、PボディによるmRNA分解の重要な第1ステップである。これらの遺伝子の過剰発現は、プルキンエ細胞の神経変性を潜在的に増強することができるか又はそれを防御することができるかのいずれかである。
1) VTA及びSNcニューロンの翻訳プロファイル
ドーパミンを産生する(ドーパミン作動性)ニューロンは、主として中脳、黒質緻密部(SNc)の腹側被蓋野(VTA)及び視床下部の弓状核に存在する。SNcのドーパミン作動性ニューロンは、パーキンソン病(PD)及びPDの薬理学的誘導モデルにおける神経変性に特に感受性がある。黒質緻密部でのドーパミン作動性ニューロンの選択的変性はPDに結びつくが、この黒質細胞消失の正確な原因は未だに不明である。腹側被蓋野ドーパミン作動性ニューロンは、比較すると比較的残されている。PD患者で見られる震え、運動緩慢、及び硬直は、大部分は線条体ドーパミン神経支配の喪失により引き起こされる。その発現がSNc及びVTA特異的遺伝子調節領域により制御される検出可能なタグと融合したリボソームタンパク質(例えば、L10a)の発現を使用して、PDの動物モデル又はPD若しくはパーキンソン病様症状と診断された被検体のSNc細胞及びVTA細胞の差次的脆弱性を調査することができる。本明細書中に記載のBACアレイ及びTRAP法を使用することにより、分子タグ化リボソームタンパク質を有するマウスを生成する。これらは、SNc又はVTAのいずれかで細胞タイプ特異的発現用の調節配列により駆動される(図38)。SNc細胞で差次的に発現されるmRNAが、PDを改善させるための潜在的な治療標的として特定されることが期待されている。
PDで見られるものとよく似たドーパミン作動性細胞の消失を、げっ歯動物(マウス又はラットのいずれでも)への、神経毒6−ヒドロキシドーパミン(6−OHDA)又は1−メチル4−フェニル1,2,3,6−テトラヒドロピリジン(MPTP)の両側性又は片側性いずれかの大脳内注射により誘導する。本明細書中に記載のBACアレイ及びTRAP法を使用することにより、分子タグ化リボソームタンパク質を有するマウスを生成する。これらは、SNc又はVTAのいずれかで細胞タイプ特異的発現用の調節配列により駆動される(図39)。6−OHDAで処置(両側性又は片側性の処置)した3週間後、SNc及びVTAニューロンからの遺伝子翻訳プロファイルを取得する。これらの翻訳プロファイルを、生理食塩水ビヒクルで処置したマウスからの参照プロファイルと比較する。PDと関連する治療標的が取得されることが期待される(図40)。
視床下核(STN)の高周波刺激は、PDの運動症状の緩和及びこの疾患に伴うことが多い消耗性の薬剤誘発ジスキネジアに現在利用可能な1つの神経外科的処置である。STNの刺激は、深部脳刺激(DBS)電極を核に正確に埋め込むことにより達成される。線条体の線条体淡蒼球細胞は、淡蒼球外節(GPe)及び視床下核(STN)を強直性に阻害する(図41)。小分子で又は他の非電気的で外科手術を必要としない方法で線条体淡蒼球細胞の活性を阻害することにより、深部脳刺激と同じように、強直性に阻害されたSTNニューロンを緩和し、PD症状を緩和することが可能となる。本明細書中に記載されており、D2 BACアレイマウスを使用して例示されている方法を使用することにより線条体の線条体淡蒼球ニューロンで選択的に富化されることが見出された1つのmRNAは、Gpr6である(表12)。Gpr6は、そのアンタゴニストをスクリーニングすることができ、PDの治療として開発することができる標的である。同様の様式で、線条体淡蒼球細胞で下方制御されることが見出されたあらゆるmRNAは、PDの治療としてのアゴニズムの標的である。
視床下部は、血圧、体温、睡眠、体液及び電解質均衡、並びに体重を含む幾つかの調節及び恒常性プロセスに中心的な役割を果たす。特に外側視床下部は、摂食及び満腹中枢に関わっている。食物摂取は、末梢性シグナルに応答する視床下部神経ペプチドにより制御される。恒常性異常は、肥満のような疾患に結びつく摂食及び代謝障害に結びつく場合がある。オレキシンは、ヒポクレチンとも呼ばれ、外側視床下部により放出される興奮性神経ペプチドホルモンである。オレキシン放出は、摂食行動、覚醒状態、及びエネルギー消費を調節する。視床下部のHcrt(オレキシン)BACアレイ系統は、外側視床下部での発現を示す。
Claims (23)
- ニューロンmRNAのプロファイルを作成する方法であって、
(a)ニューロンで選択的に発現される遺伝子の調節領域により発現が制御されるタグ化リボソームL10aタンパク質を発現する第1の非ヒト生物からリボソーム複合体を単離する工程であって、前記複合体は、前記タグ化リボソームL10aタンパク質およびそれに付随する活発に結合しかつ/または翻訳されるmRNAを含む、工程と
(b)前記活発に結合しかつ/または翻訳されるmRNAのうちの1つ以上のレベルを定量化する工程と、
を含む方法。 - 工程a〜bが、前記非ヒト生物の少なくとも第1の個体および第2の個体に対して実施され、そして前記方法が、
前記少なくとも第1の個体と第2の個体とにおいて観察された、定量化された前記レベルを比較し、定量化された前記レベルの間の差異を決定する工程、
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 - 異なる個体に対する工程a〜bの実施が、異なる時間に行われる、請求項1に記載の方法。
- 少なくとも1つの個体に対する工程a〜bのより早期の実施により、少なくとも1つの活発に結合しかつ/または翻訳されるmRNAについての参照定量化レベルが確立される、請求項2に記載の方法。
- 非ヒト生物において密接に関連するニューロン細胞タイプの特徴的な分子特性を規定するための方法であって、
(a)ニューロンで選択的に発現される遺伝子の調節領域により発現が制御されるタグ化リボソームL10aタンパク質を発現する前記非ヒト生物からリボソーム複合体を単離する工程であって、前記複合体は、前記タグ化リボソームL10aタンパク質およびそれに付随する活発に結合しかつ/または翻訳されるmRNAを含む、工程と
(b)前記活発に結合しかつ/または翻訳されるmRNAのうちの1つ以上のレベルを定量化する工程と、
(c)mRNAの生成されたプロファイルに基づいて、前記密接に関連するニューロン細胞タイプの前記特徴的な分子特性を規定する工程と
を含む方法。 - 前記リボソームL10aタンパク質が、200アミノ酸よりも長いポリペプチドによってタグ化されている、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記RNAが、参照試料と比較して、ニューロンにおいて差次的に発現される、請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 前記調節領域が、中型星状神経細胞において発現される、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記調節領域が、線条体黒質ニューロン、線条体淡蒼球ニューロン、脳幹運動ニューロン、脊髄運動ニューロン、上位運動ニューロン、内側手綱のコリン作動性ニューロン、プルキンエ細胞、ベルクマングリア、介在ニューロン、星状細胞またはかご細胞で選択的に発現される遺伝子の調節領域である、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記調節領域が、Drd1a遺伝子座、Drd2遺伝子座、コリンアセチルトランスフェラーゼ(Chat)遺伝子座、Pcp2遺伝子座、Lypd6遺伝子座、プレプロノシセプチン(Pnoc)遺伝子座またはSeptin4遺伝子座に由来する調節配列を含む、請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 前記中型星状神経細胞が、パーキンソン病、依存症、注意欠陥過活動性障害、統合失調症、ハンチントン病又は運動失調症のいずれか1つから選択される疾患又は障害に関連している、請求項8〜10のいずれか一項に記載の方法。
- 前記リボソームタンパク質が検出可能なタグを含む、請求項1〜11のいずれか一項に記載の方法。
- 前記検出可能なタグがeGFPである、請求項12に記載の方法。
- mRNAの前記プロファイルが、Gpr6、Htr3a、Htra3、Gpr88、Sv2C、Adra2c、Hrh2、Oprd1、TrhrまたはUts2に由来するmRNAを含む、請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記単離する工程が架橋試薬を用いずに実施される、請求項1〜14のいずれか一項に記載の方法。
- ニューロン疾患を処置するための1以上の候補治療薬を同定するための方法であって、請求項1に記載の方法を使用して、1つ以上のニューロンmRNAを調節する1つ以上の候補治療薬をスクリーニングする工程を含み、前記スクリーニングする工程は、単離された複合体においてmRNAプロファイルを分析して、前記1つ以上の候補治療薬による翻訳の調節を評価することを含む、方法。
- 前記1以上の候補治療薬に曝露された1個体の非ヒト生物からリボソーム複合体を単離する工程、および前記1以上の候補治療薬に曝露されていない1個体の非ヒト生物に対して、前記mRNAプロファイルを比較する工程をさらに含む、請求項16に記載の方法。
- 1以上の治療薬への曝露の影響をモニタリングするための方法であって、請求項1に記載の方法を使用して、前記1以上の治療薬へ曝露された1個体の非ヒト生物からリボソーム複合体を単離し、mRNAプロファイルを同定する工程、および前記1以上の治療薬に曝露されていない1個体の非ヒト生物に対して、前記mRNAプロファイルを比較する工程を含む、方法。
- 前記mRNAが、マイクロアレイにさらに配置されている、請求項1〜18のいずれか一項に記載の方法。
- リボソームタンパク質及び検出可能なタグを含む融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列を含む組換えベクターを含むキットであって、該ヌクレオチド配列は、ニューロンにおいて選択的に発現される遺伝子の調節領域をコードするヌクレオチド配列に作用可能に連結され、前記リボソームタンパク質は、L10aである、キット。
- 前記検出可能なタグが、200アミノ酸よりも長いポリペプチドである、請求項20に記載のキット。
- 前記検出可能なタグがeGFPである、請求項20または21に記載のキット。
- 中型星状神経細胞、コリン作動性ニューロンまたは小脳細胞において選択的に発現される遺伝子の前記調節領域をコードする前記ヌクレオチド配列が、前記中型星状神経細胞、前記コリン作動性ニューロンまたは前記小脳細胞において選択的に発現される前記遺伝子の5’又は3’非翻訳配列を含む、請求項20〜22のいずれか一項に記載のキット。
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