JP5256199B2 - アルブミン−インスリン融合タンパク質 - Google Patents
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Description
本出願は、2006年10月10日に提出された米国仮特許出願第60/850,545号、および2006年8月7日に提出された米国仮特許出願第60/835,976号の恩典を主張し、それらの開示内容はその全体が参照により本明細書に組み入れられる。
本発明は一般に、アルブミンまたはアルブミンの断片もしくは変異体と融合した、インスリン、インスリン活性を有するインスリン類似体、インスリン断片またはそれらの変異体を含む、治療用タンパク質に関する。本発明は、治療用アルブミン-インスリン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、治療用アルブミン-インスリン融合タンパク質、組成物、薬学的組成物、製剤およびキットを範囲に含む。治療用アルブミン-インスリン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドによる形質転換を受けた宿主細胞も本発明の範囲に含まれ、これらのポリヌクレオチドおよび/または宿主細胞を用いて本発明のアルブミン-インスリン融合タンパク質を作製する方法も同様である。
また、組換え的に生産されたインスリンなどの治療用タンパク質は、インビボで、例えば患者に投与された後に、短い半減期を示すこともある。インビボでより長寿命の活性を示すインスリンなどの治療用タンパク質は、それらが患者におけるより長い投薬間期間を可能にすることから望ましい。
)、IGF-I C-ペプチド連結配列(
)、およびアルブミンの断片が含まれる(図1A〜D)。いくつかの態様において、連結配列は、インスリンの完全長C-ペプチド連結配列を含まない。他の態様において、連結配列は、IGF-IのC-ペプチド連結配列の少なくとも一部分を含む。任意で、アルブミン-インスリン融合タンパク質は、アルブミン-インスリン融合タンパク質がIGF-I受容体と結合しないか、またはIGF-Iよりも低い親和性で結合するように、1つまたは複数のアミノ酸の置換、付加または欠失を含むように改変されたIGF-IのC-ペプチド連結配列を含んでもよい。いくつかの態様において、アルブミン-インスリン融合タンパク質は、IGF-I受容体に対するIGF-Iの親和性を基準として約80%、約60%、約40%、約20%、約10%または約5%を超えない相対的親和性で、IGF-I受容体と結合する。いくつかの態様において、アルブミン-インスリン融合タンパク質は、第2位のチロシンがチロシン以外のアミノ酸(例えば、アラニン、グリシンまたはセリン)によって置き換えられるように修飾されたIGF-IのC-ペプチド連結配列を含む。好ましくは、アルブミン-インスリン融合タンパク質はマイトジェン活性を示さないか、またはIGF-Iを基準として約50%未満(もしくは好ましくはIGF-Iを基準として約30%、もしくはより好ましくはIGF-Iを基準として約10%未満)のマイトジェン活性を示す。いくつかの態様において、アルブミン-インスリン融合タンパク質のマイトジェン活性は、適切な細胞培養株(例えば、L6細胞株)においてインビトロで評価することができる。
);HSA/MFα-1ハイブリッドシグナル配列(
);K.ラクティスキラー/MFα-1融合リーダー配列(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体(
);改変HSAリーダー(
);改変HSAリーダー(
);改変HSA(A14)リーダー(
);改変HSA(S14)リーダー(
)、改変HSA(G14)リーダー(
);改変HSA(G14)リーダー(
);コンセンサスシグナル配列(
);K.ラクティスキラー毒素プレプロ配列(
);イヌリナーゼ配列(
)が含まれる。
(CoGenesys連結配列(Linking Sequence)No.1)、
(CoGenesys連結配列No.2)および
(CoGenesys連結配列No.3)から選択することができる。
(CoGenesys連結配列No.5)および
(CoGenesys連結配列No.6)が含まれうる。
(CoGenesys連結配列No. 7)を有するポリペプチドが含まれる。好ましくは、アルブミン-インスリン融合タンパク質はIGF-1受容体と結合しないか、またはIGF-Iよりも低い親和性で結合する。いくつかの態様において、アルブミン-インスリン融合タンパク質はIGF-1受容体と、IGF-I受容体に対するIGF-Iの親和性を基準として約80%、約60%、約40%、約20%、約10%もしくは約5%を超えない相対的親和性で結合する。
[請求項101]
インスリン活性を有し、かつ、インスリン類似体のN末端、C末端、または両末端と融合したアルブミンまたはその変異体を含む融合タンパク質であって、インスリン類似体が以下からなる群より選択される式を有する、融合タンパク質:
(a)-B( 1-30 )-X-A( 1-21 )-、式中、Xはアルブミンの断片を含むポリペプチドであり、アルブミンの断片は約6〜約30アミノ酸長である;
(b)-B( 1-30 )-X-A( 1-21 )-、式中、Xは、KK、KR、RK、およびRRからなる群より選択される連続した2つの塩基性アミノ酸残基の配列を含まないポリペプチドである;
(c)-B( 1-30 )-X-A( 1-21 )-、式中、Xは完全長インスリンC-ペプチドを含まないポリペプチドである;
(d)-B( 1-30 )-X-A( 1-21 )-、式中、XはIGF-I C-ペプチドの断片を含むポリペプチドであり、ここで、Xは約6〜約30アミノ酸長のポリペプチドである;および
(e)-B( 1-30 )-X-A( 1-21 )-、式中、Xは配列-G-Z 1 -G-Z 2 n -を有するポリペプチドであって;Z 1 はチロシンではなく;Z 2 はn=0〜10のアミノ酸である。
[請求項102]
アルブミンの断片が、
(CoGenesys連結配列No.1)、
(CoGenesys連結配列No.2)および
(CoGenesys連結配列No.3)からなる群より選択される、請求項101(a)記載の融合タンパク質。
[請求項103]
Xが、アミノ酸配列
(CoGenesys連結配列No.7)を有するポリペプチドである、請求項101(c)記載の融合タンパク質。
[請求項104]
Xが、
(CoGenesys連結配列No.5)および
(CoGenesys連結配列No.6)からなる群より選択されるアミノ酸配列を有するポリペプチドである、請求項101(e)記載の融合タンパク質。
[請求項105]
Xがチロシン残基を含まないポリペプチドである、請求項101(d)または101(e)記載の融合タンパク質。
[請求項106]
Xが、ポリペプチドのアミノ酸2位にチロシン残基を含まないポリペプチドである、請求項101(d)または101(e)記載の融合タンパク質。
[請求項107]
Xが、配列-G-Z 1 -G-Z 2 n -P-Q-T-を有するポリペプチドである、請求項101(e)記載の融合タンパク質。
[請求項108]
アルブミンの断片またはXポリペプチドが、KK、KR、RK、およびRRからなる群より選択される連続した2つの塩基性アミノ酸残基の配列を含まない、請求項101(a)、101(c)、101(d)、または101(e)記載の融合タンパク質。
[請求項109]
101(a)におけるアルブミンの断片、または101(b)におけるXポリペプチドが、リジン残基またはアルギニン残基を含まない、請求項101〜108のいずれか一項記載の融合タンパク質。
[請求項110]
Xが約6〜約30アミノ酸長のポリペプチドである、請求項101(b)、101(c)、または101(e)記載の融合タンパク質。
[請求項111]
(a)IGF-I受容体と結合しないか、もしくは、IGF-Iよりも低い(例えば、IGF-I受容体に対するIGF-Iの親和性を基準として約80%、約60%、約40%、約20%、約10%、もしくは約5%を超えない)親和性で結合する;または
(b)マイトジェン活性を示さないか、もしくは、IGF-Iを基準として約50%を超えない(もしくは、好ましくはIGF-Iを基準として約30%を超えない、もしくは、より好ましくはIGF-Iを基準として約10%を超えない)マイトジェン活性を示す、
請求項101〜110のいずれか一項記載の融合タンパク質。
[請求項112]
アルブミンまたはその変異体が、インスリン類似体のN末端と融合されている、請求項101〜111のいずれか一項記載の融合タンパク質。
[請求項113]
アルブミンまたはその変異体が、インスリン類似体のC末端と融合されている、請求項101〜112のいずれか一項記載の融合タンパク質。
[請求項114]
アルブミンまたはその変異体が、インスリン類似体のN末端およびC末端と融合されている、請求項101〜113のいずれか一項記載の融合タンパク質。
[請求項115]
N末端リーダー配列またはシグナル配列をさらに含む、請求項101〜114のいずれか一項記載の融合タンパク質。
[請求項116]
N末端リーダー配列またはシグナル配列が、アルブミンリーダー配列、インスリンリーダー配列、MPIF-1シグナル配列、スタニオカルシンシグナル配列、インベルターゼシグナル配列、酵母接合因子αシグナル配列、K.ラクティス(K. lactis)キラー毒素リーダー配列、免疫グロブリンIgシグナル配列、フィビュリン(Fibulin)B前駆体シグナル配列、クラスタリン前駆体シグナル配列、インスリン様増殖因子結合タンパク質4シグナル配列、酸ホスファターゼ(PHO5)リーダー、MFoz-1のプレ配列、Oグルカナーゼ(BGL2)のプレ配列、S.ディアスタティクス(S. diastaticus)グルコアミラーゼII分泌リーダー配列;S.カリスベルゲンシス(S. carisbergensis)αガラクトシダーゼ(MEL1)分泌リーダー配列;カンジダグルコアミラーゼリーダー配列;バキュロウイルス発現系に用いるためのgp67シグナル配列;およびS.セレビシエ(S. cerevisiae)インベルターゼ(SUC2)リーダーからなる群より選択される、請求項115記載の融合タンパク質。
[請求項117]
N末端リーダー配列またはシグナル配列が、
(
);HSA/MFα-1ハイブリッドシグナル配列
(
);K.ラクティスキラー/MFα-1融合リーダー配列
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);改変HSAリーダー
(
);改変HSAリーダー
(
);改変HSA(A14)リーダー
(
);改変HSA(S14)リーダー
(
)、改変HSA(G14)リーダー
(
);改変HSA(G14)リーダー
(
);コンセンサスシグナル配列
(
);K.ラクティスキラー毒素プレプロ配列
(
);および、イヌリナーゼ配列
(
)からなるハイブリッドシグナル配列の群より選択される、請求項115記載の融合タンパク質。
[請求項118]
請求項101〜117のいずれか一項記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
[請求項119]
請求項118記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
[請求項120]
請求項119記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
[請求項121]
請求項120記載の宿主細胞を発酵させる段階を含む、アルブミン-インスリン融合タンパク質を調製するための方法。
[請求項122]
請求項101〜117のいずれか一項記載の融合タンパク質と薬学的添加剤とを含む、薬学的組成物。
[請求項123]
請求項101〜117のいずれか一項記載の融合タンパク質と薬学的添加剤とを含む、薬学的エアロゾル組成物。
[請求項124]
鼻送達、肺送達、またはその両方のために製剤化されている、請求項123記載の薬学的エアロゾル組成物。
[請求項125]
液体エアロゾルまたは乾燥粉末エアロゾルである、請求項124記載の薬学的エアロゾル組成物。
[請求項126]
液体エアロゾルが、以下からなる群より選択される平均直径を有する液滴を含む、請求項125記載の薬学的エアロゾル組成物:
(a)約2〜約10ミクロン;
(b)約2〜約6ミクロン;
(c)約2ミクロン未満;
(d)約5〜約100ミクロン;および
(e)30〜約60ミクロン。
[請求項127]
乾燥粉末エアロゾルが、噴霧乾燥粉末エアロゾルまたは凍結乾燥粉末エアロゾルである、請求項125記載の薬学的エアロゾル組成物。
[請求項128]
請求項101〜117のいずれか一項記載の融合タンパク質を含む、噴射剤を利用するpMDIに用いるための薬学的エアロゾル組成物。
[請求項129]
噴射剤が非CFC噴射剤である、請求項128記載の薬学的エアロゾル組成物。
[請求項130]
医用薬剤を調製するための、請求項122記載の薬学的組成物の使用であって、医用薬剤が代謝障害の治療において有用である、使用。
[請求項131]
代謝障害が糖尿病である、請求項130記載の方法。
生物活性のあるタンパク質およびペプチドとヒト血清アルブミンとの融合は、医学的用途のある新たなタンパク質産物を作り出すために非常に役立つことが判明している。生物活性のある構成要素に対して加えられる半減期の延長は現実に明白であるように思われるが(アルブミンは長い半減期を有するため)、この概念は予測可能というにはほど遠いことが判明している。アルブミン融合タンパク質の半減期はアルブミンよりも短いことが常であり、アルブミン融合タンパク質の血漿中半減期はタンパク質組成、さらには製造のために用いた宿主系によっても大きく異なる。例えば、酵母で製造された場合には、エリスロポエチン-HSAは短い半減期(EPO単独よりもそれほど長くはない)を有するが、哺乳動物細胞で製造された場合にはEPO-HSAはより長い半減期を有する。
以下の定義は、本明細書の全体を通じて使用される特定の用語の理解を容易にするために提供される。
上述したように、本発明のポリヌクレオチドは、好ましくは遺伝的融合によって互いに結びついている、治療用タンパク質の少なくとも断片もしくは変異体、およびヒト血清アルブミンの少なくとも断片もしくは変異体を含む、または代替的にはそれらからなるタンパク質をコードする。好ましい治療用タンパク質はインスリンまたはインスリン類似体である。インスリン(110アミノ酸)は、アミノ酸配列:
を有する。B鎖(
)はアミノ酸25〜54位に存在する。A鎖(
)はアミノ酸90〜110位に存在する。B鎖およびA鎖を連結するC-ペプチド(
)はアミノ酸55〜89位に存在する。本明細書に開示される治療用タンパク質には、インスリンのC-ペプチドまたは別の天然もしくは人工的な配列によって連結されたインスリンのB鎖およびA鎖が含まれうる。B鎖およびA鎖を連結するために用いられる天然の配列を、アミノ酸の置換、付加または欠失を含むように修飾してもよい。本明細書に開示される治療用タンパク質には、一本鎖インスリン分子が含まれうる。
1つの態様において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、ヒトまたは非ヒト動物種の1つまたは複数の血清アルブミンタンパク質が、N末端またはC末端で同じ非ヒト動物種の1つまたは複数のインスリンタンパク質とタンデムまたはインフレームに融合されたものを含みうる。非ヒトの血清アルブミンおよびインスリンタンパク質は当技術分野で周知であり、公開データベースで入手可能である。1つの特定的な態様において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、1つまたは複数のウシ(Bos taurus)血清アルブミンタンパク質が、N末端またはC末端で、1つまたは複数のインスリンタンパク質とタンデムまたはインフレームに融合されたものを含む。
ウシ(Bos taurus)ABBOS、CAA76847、P02769、CAA41735、229552、AAF28806、AAF28805、AAF28804、AAA51411
イノシシ(Sus scrofa)P08835、CAA30970、AAA30988
ウマ(Equus caballus)ABHOS、AAG40944、P35747、CAA52194
ヒツジ(ovis aries)ABSHS、P14639、CAA34903
サケ(Salmo salar)ABONS2、ABONS2、CAA36643、CAA43187
ニワトリ(Gallus gallus)ABCHS、P19121、CAA43098
イエネコ(Felis catus)P49064、S57632、CAA59279、JC4660
イヌ(Canis)P49822、S29749、CAB64867、イエイヌ(familiaris)CAA76841、AAB30434
断片
本発明はさらに、本発明の治療用タンパク質(例えば、インスリンまたはインスリン類似体)、アルブミンタンパク質、および/またはアルブミン融合タンパク質の断片も対象とする。本発明はまた、本発明の治療用タンパク質(例えば、インスリンまたはインスリン類似体)、アルブミンタンパク質、および/またはアルブミン融合タンパク質の断片をコードするポリヌクレオチドも対象とする。
「変異体」とは、参照の核酸またはポリペプチドとは異なるものの、その必須な特性を保っているポリヌクレオチドまたは核酸のことを指す。一般に、変異体は全体としてその参照の核酸またはポリペプチドに対して非常に類似しており、多くの領域では同一である。
「機能的活性を有するポリペプチド」とは、ある治療用タンパク質の完全長のもの、プロタンパク質、および/または成熟形態に付随する1つまたは複数の公知の機能的活性を示しうるポリペプチドのことを指す。そのような機能的活性には、生物活性、抗原性[抗ポリペプチド抗体と結合する(またはあるポリペプチドが結合することと競合する)能力]、免疫原性(本発明の特定のポリペプチドと結合する抗体を生じさせる能力)、本発明のポリペプチドと多量体を形成する能力、およびポリペプチドの受容体またはリガンドと結合する能力が含まれる。
上記のように、本発明のアルブミン融合タンパク質は治療用タンパク質の少なくとも断片または変異体およびヒト血清アルブミンの少なくとも断片または変異体を含み、それらは好ましくは遺伝子融合または化学的結合によって互いに結びついている。
本発明は、対象に対する本発明の化合物または薬学的組成物の有効量の投与による治療、抑制および予防の方法を提供する。好ましい態様において、化合物は実質的に精製される(例えば、その効果を制限するかまたは望ましくない副作用を生じる物質を実質的に含まない)。対象は好ましくは動物であり、これにはウシ、ブタ、ウマ、ニワトリ、ネコ、イヌなどの動物が非限定的に含まれ、好ましくは好ましくは哺乳動物、最も好ましくはヒトである。
本発明は一般に、アルブミン融合タンパク質、および疾患または障害を治療する、予防する、または緩和する方法に関する。本明細書で用いる場合、「アルブミン融合タンパク質」とは、アルブミン(またはその断片または変異体)の少なくとも1つの分子と、治療用タンパク質(またはその断片または変異体)の少なくとも1つの分子との融合によって形成されるタンパク質のことを指す。本発明のアルブミン融合タンパク質には、好ましくは遺伝子融合によって互いに、または互いと結びついた、治療用タンパク質の少なくとも1つの断片または変異体、およびヒト血清アルブミンの少なくとも1つの断片または変異体が含まれる(すなわち、アルブミン融合タンパク質は、治療用タンパク質の全体または一部分をコードするポリヌクレオチドがアルブミンの全体または一部分をコードするポリヌクレオチドとインフレームに連結された核酸の翻訳によって生成される)。治療用タンパク質およびアルブミンタンパク質は、ひとたびアルブミン融合タンパク質の一部となれば、それぞれアルブミン融合タンパク質の「一部分」「領域」または「部分」と称することができる。
糖尿病の治療のための臨床評価に適した一本鎖インスリン/アルブミン融合タンパク質が同定されている。リードの選択には、適した薬理活性、安全性プロファイル(マイトジェン性)および商業規模での製造が実施可能な生産収量を備えた組成物の同定が必要とされた。リードの選択は、40種を上回る異なる組成物を評価した、非常に大規模なスクリーニングの取り組みの結果であった。活性、生産収量および潜在的毒性(マイトジェン活性)はいずれも、組成物が異なれば大きく異なった。
*10mg/kg;**20mg/kg
ND、試験されず;CID、構築物ID、AUEC(グルコースに関する効果曲線下面積、媒体と処置との比較に関する曲線下面積の差)
本発明のアルブミン融合タンパク質は、酵母、細菌などの微生物、またはヒトもしくは動物の細胞株からの分泌により、組換え分子として生産することができる。好ましくは、ポリペプチドは宿主細胞から分泌される。
a)MPIF-1シグナル配列(例えば、GenBankアクセッション番号AAB51134のアミノ酸1-21)
b)スタニオカルシンシグナル配列(
)
c)HSAシグナル配列のプレ-プロ領域(例えば、
)
d)HSAシグナル配列のプレ領域(例えば、
)または例えば
などのその変異体
e)インベルターゼシグナル配列(例えば、
)
f)酵母接合因子αシグナル配列(例えば、
)
g)K.ラクティスキラー毒素リーダー配列 h)ハイブリッドシグナル配列(例えば、
)
h)HSA/MFα-1ハイブリッドシグナル配列(HSA/kex2としても知られる)(例えば、
)
i)K.ラクティスキラー/MFα-1融合リーダー配列(例えば、
)
j)免疫グロブリンIgシグナル配列(例えば、
)
k)フィブリンB前駆体シグナル配列(例えば、
)
l)クラスター前駆体シグナル配列(例えば、
)
m)インスリン様成長因子-結合タンパク質4シグナル配列(例えば、
)
n)HSAシグナル配列のプレ-プロ領域の変異体、例えば、
;改変HSAリーダーHSA
;改変HSAリーダーHSA
;改変HSA(A14)リーダー-
;改変HSA(S14)リーダー-
、改変HSA(G14)リーダー-
o)コンセンサスシグナル配列(
)
p)酸ホスファターゼ(PH05)リーダー(例えば、
)
q)MFoz-1のプレ配列
r)Oグルカナーゼ(BGL2)のプレ配列
s)キラー毒素リーダー
t)キラー毒素のプレ配列
u)K.ラクティスキラー毒素プレプロ(29個のアミノ酸;プレの16個のアミノ酸およびプロの13個のアミノ酸)
v)S.ジアスタチクスグルコアミラーゼII分泌リーダー配列
w)S.カールスベルゲンシス(S.carlsbergensis)α-ガラクトシダーゼ(MEL1)分泌リーダー配列
x)カンジダグルコアルニラーゼリーダー配列
y)EP-A-387319(参照により本明細書に組み入れられる)に開示されたハイブリッドリーダー
z)EP-A-387319(参照により本明細書に組み入れられる)に開示されたハイブリッドリーダー
aa)(バキュロウイルス発現系と併せた)gp67シグナル配列(例えば、GenBankアクセッション番号AAA72759のアミノ酸1-19位)または
bb)治療用タンパク質Xの天然のリーダー;
cc)JP 62-096086(911036516として承認、参照により本明細書に組み入れられる)に開示されたS.セレビシエインベルターゼ(SUC2)リーダー;または
dd)イヌリナーゼ-
ee)改変TA57プロペプチドリーダー変異体#1--8
ff)改変TA57プロペプチドリーダー変異体#2--9
本発明はまた、本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクター、宿主細胞、ならびに合成および組換え技法によるアルブミン融合タンパク質の生産にも関する。ベクターは、例えば、ファージ、プラスミド、ウイルスまたはレトロウイルスベクターであってよい。レトロウイルスベクターは、複製能を有してもよく、複製能欠損であってもよい。後者の場合、ウイルス増殖は、一般に宿主細胞を補完する場合にしか起こらないと考えられる。
a)MPIF-1シグナル配列(例えば、GenBankアクセッション番号AAB51134のアミノ酸1-21位)
b)スタニオカルシンシグナル配列(
)
c)HSAシグナル配列のプレ-プロ領域(例えば、
)
d)HSAシグナル配列のプレ領域(例えば、
)または例えば、
などのその変異体、
e)インベルターゼシグナル配列(例えば、
)
f)酵母接合因子αシグナル配列(例えば、
)
g)K.ラクティスキラー毒素リーダー配列
h)ハイブリッドシグナル配列(例えば、
)
i)HSA/MFα-1ハイブリッドシグナル配列(HSA/kex2としても知られる)(例えば、
)
j)K.ラクティスキラー/MFα-I融合リーダー配列(例えば、
)
k)免疫グロブリンIgシグナル配列(例えば、
)
l)フィブリンB前駆体シグナル配列(例えば、
)
m)クラスター前駆体シグナル配列(例えば、
)
n)インスリン様成長因子-結合タンパク質4シグナル配列(例えば、
)
o)HSAシグナル配列のプレプロ-領域の変異体、例えば、
、改変HSAリーダー
;改変HSAリーダー
;改変HSA(A14)リーダー-
、改変HSA(S14)リーダー-MKWVTFISLLFLFSGVSG、改変HSA(G14)リーダー-
p)コンセンサスシグナル配列(
)
q)酸ホスファターゼ(PH05)リーダー(例えば;
)
r)MFoz-1のプレ配列
s)Oグルカナーゼ(BGL2)のプレ配列
t)キラー毒素リーダー
u)キラー毒素のプレ配列
v)K.ラクティスキラー毒素プレプロ(29個のアミノ酸;プレの16個のアミノ酸およびプロの13個のアミノ酸)
w)S.ジアスタチクスグルコアルニラーゼII分泌リーダー配列
x)S.カールスベルゲンシスα-ガラクトシダーゼ(MEL1)分泌リーダー配列
y)カンジダグルコアルニラーゼリーダー配列
z)EP-A-387319(参照により本明細書に組み入れられる)に開示されたハイブリッドリーダー
aa)(バキュロウイルス発現系と併せた)gp67シグナル配列(例えば、GenBankアクセッション番号AAA72759のアミノ酸1-19位)または
bb)治療用タンパク質Xの天然のリーダー;
cc)JP 62-096086(911036516として特許、参照により本明細書に組み入れられる)に開示されるようなS.セレビシエインベルターゼ(SUC2)リーダー;または
dd)イヌリラーゼ-
ee)改変TA57プロペプチドリーダー変異体#1--12
ff)改変TA57プロペプチドリーダー変異体#2--13
本明細書中に特定されたポリヌクレオチドのそれぞれを、さまざまな方法において試薬として用いることができる。以下の記述は例示的と見なされるべきであり、公知の手法を利用している。
本発明のアルブミン融合タンパク質を発現するトランスジェニック生物も本発明に含まれる。トランスジェニック生物は、組換え性、外因性またはクローニングされた遺伝物質が移入された遺伝的改変生物である。そのような遺伝物質はしばしば導入遺伝子と称される。導入遺伝子の核酸配列は、コードされるタンパク質の至適な発現および分泌に必要な可能性のある1つまたは複数の転写調節配列および他の核酸配列、例えばイントロンを含みうる。導入遺伝子は、生物からの、または生物により産生された産物からの、例えば生物の乳、血液、尿、卵、毛もしくは種子からのその回収を容易にする様式で、コードされるタンパク質の発現を導くように設計することができる。導入遺伝子は、標的動物の種と同様の種またはそれとは異なる種のゲノムに由来する核酸配列からなってよい。導入遺伝子は、その特定の核酸配列が通常であれば見いだされないゲノムの座位に、または導入遺伝子の正常な座位のいずれかに組み込むことができる。
本発明のアルブミン融合タンパク質またはその製剤は、非経口的(例えば、皮下または筋内)注入または静脈内注入を含む任意の従来の方法によって投与することができる。治療は、単回投与または一定の期間にわたる複数回の投与からなりうる。
本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするアルブミン融合タンパク質および/またはポリヌクレオチドは、生物活性の1つまたは複数に関する検査のためのアッセイに用いることができる。本発明のアルブミン融合タンパク質および/またはポリヌクレオチドが特定のアッセイで活性を示す場合には、融合タンパク質に対応する治療用タンパク質は、その生物活性と関連のある疾患に関与している可能性が高い。したがって、その融合タンパク質は関連のある疾患を治療するために用いうると考えられる。
実施例1
pScNHSAおよびpScCHSAの作製
ベクターpScNHSA(ATCC寄託番号PTA-3279)およびpScCHSA(ATCC寄託番号PTA-3276)は、pPPC0005(ATCC寄託番号PTA-3278)の派生物であり、治療用タンパク質またはそれらの断片もしくは変異体をコードするポリヌクレオチドが、ヒト血清アルブミン「HSA」をコードするポリヌクレオチドに隣接して翻訳フレーム内に挿入されるクローニングベクターとして用いられる。pScCHSAは、治療用タンパク質-HSA融合物を作製するために用いることができ、一方、pScNHSAはHSA-治療用タンパク質融合物を作製するために用いることができる。
成熟アルブミンタンパク質をコードするDNAに対する治療用タンパク質N末端をコードするDNAのクローニングを容易にするためのベクターを、pPPC0005におけるキメラ性HSAシグナルペプチドをコードする核酸配列がXho I部位およびCla I部位を含むように変更することによって作製した。
。続いて、2回目のPCRを、上流隣接プライマー
、下流隣接プライマー
を用いて実施した。その結果得られたPCR産物を続いて精製して、Afl IIおよびXba Iで消化し、pPPC0006中の同一の部位内に連結させてpScCHSAを作製した。その結果得られたプラスミドは、単一の配列内に人工的に導入されたXho IおよびCla I部位を有する。Xho I部位の存在により、シグナル配列の末端でLDKRからLEKRへの単一アミノ酸変化が生じる。このDからEへの変化は、5' Sal I部位(Xho I部位と適合性がある)および3'Cla I部位を有する、アルブミン融合タンパク質の治療用タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む核酸配列が、pScCHSAのXho I部位およびCla I部位に連結された場合には、最終的なアルブミン融合タンパク質発現プラスミド中には存在しない。Sal IのXho Iとの連結は、シグナルペプチド配列の元のアミノ酸配列を回復させる。アルブミン融合タンパク質の治療用部分をコードするDNAを、Kex2部位の後(Kex2は、シグナルペプチドの末端にて二塩基アミノ酸配列KRの後で切断する)かつCla I部位の前に挿入してもよい。
成熟アルブミンタンパク質をコードするDNAに対する治療用タンパク質C末端をコードするDNAのクローニングを容易にするためのベクターを、3つの8塩基対制限部位をpScCHSAに付加することによって作製した。Asc I制限部位、Fse I制限部位およびPme I制限部位を、成熟HSAタンパク質をコードする核酸配列の末端にて、Bsu36 I部位とHind III部位との間に付加した。これは、Asc I制限部位、Fse I制限部位、およびPme I制限部位を含む2つの相補的合成プライマーの使用によって達成した。
。これらのプライマーをアニーリングさせて、Bsu36 IおよびHind IIIで消化し、pScCHSA中の同じ部位に連結させてpScNHSAを作製した。
酵母形質転換のための一般的な構築物の作製
ベクターpScNHSAおよびpScCHSAは、治療用タンパク質またはそれらの断片もしくは変異体をコードするポリヌクレオチドを、成熟ヒト血清アルブミン「HSA」をコードするポリヌクレオチドに隣接して挿入するためのクローニングベクターとして用いることができる。pScCHSAは、治療用タンパク質-HSA融合物を作製するために用いられ、一方、pScNHSAは、HSA-治療用タンパク質融合物を作製するために用いることができる。
インスリンタンパク質または類似体をコードするDNAを、融合構築物の作製を容易にするプライマー(例えば、制限部位を付加することにより、継ぎ目のない融合物をコードすることにより、リンカー配列をコードすることにより、など)を用いてPCR増幅することができる。例えば、当業者は、治療用タンパク質をコードするDNAの5'末端に対してHSAの成熟形態の最後の4つのアミノ酸をコードする(かつBsu36I部位を含む)ポリヌクレオチドを付加する5'プライマー;ならびに治療用タンパク質をコードする配列の3'末端に終止コドンおよび適切なクローニング部位を付加する3'プライマーを設計することができる。例えば、治療用タンパク質をコードするDNAを増幅するために用いられる順方向プライマーは、Bsu36I部位を含む、配列
を有することができ、ここで大文字のヌクレオチドは、成熟HSAタンパク質の最後の4つのアミノ酸(ALGL)をコードし、(N)15は、関心対象の治療用タンパク質をコードする最初の15ヌクレオチドと同一である。同様に、治療用タンパク質をコードするDNAを増幅するのに用いられる逆方向プライマーは、Pme I部位、Fse I部位、Asc I部位、2つのタンデム終止コドンの逆相補物を含む、配列
を有することができ、ここで(N)15は、関心対象の治療用タンパク質をコードする最後の15のヌクレオチドの逆相補物と同一である。ひとたびPCR産物が増幅されると、それはBsu36Iおよび(Asc I、Fse IまたはPme I)の1つで切断されて、pScNHSA中に連結される。
上記の方法と同様に、治療用タンパク質をコードするDNAを、以下のプライマーを用いてPCR増幅することができる:治療用タンパク質をコードするDNAの5'末端に、Sal I部位を含みかつHSAリーダー配列の最後の3つのアミノ酸DKRをコードするポリヌクレオチドを付加する5'プライマー;および、治療用タンパク質をコードするDNAの3'末端に、Cla I部位を含みかつ成熟HSAの最初のいくつかのアミノ酸をコードするポリヌクレオチドを付加する3'プライマー。例えば、治療用タンパク質をコードするDNAを増幅するために用いられる順方向プライマーは、Sal I部位を含む、配列
を有することができ、ここで大文字のヌクレオチドは、HSAリーダー配列の最後の3つのアミノ酸(DKR)をコードし、(N)15は関心対象の治療用タンパク質をコードする最初の15ヌクレオチドと同一である。同様に、治療用タンパク質をコードするDNAを増幅するために用いられる逆方向プライマーは、Cla I部位、およびHSAの成熟形態の最初の9アミノ酸をコードするDNAの逆相補物を含む、配列
を有することができ、(N)15は関心対象の治療用タンパク質をコードする最後の15ヌクレオチドの逆相補物である。ひとたびPCR産物が増幅されれば、この産物をSal IおよびCla Iで切断して、Xho IおよびCla Iで消化されたpScCHSA中に連結させることができる。異なるシグナル配列またはリーダー配列を所望することもでき、これには例えば、インベルターゼ「INV」(Swiss-ProtアクセッションP00724)、交配因子α「MAF」(GenbankアクセッションAAA18405)、MPIF(Geneseq AAF82936)、フィビュリンB(Swiss-ProtアクセッションP23142)、クラステリン(Swiss-ProtアクセッションP10909)、インスリン様増殖因子結合タンパク質4(Swiss-ProtアクセッションP22692)があり、HSAリーダー配列の順列置換物を、当技術分野で公知の標準的な方法によって適切なベクター中にサブクローニングすることができる。
続いて、pScNHSAまたはpScCHSAから作製されたN末端またはC末端アルブミン融合タンパク質のいずれかをコードするDNAを含むNot I断片を、LEU2選択マーカーを有するpSAC35のNot I部位にクローニングすることができる。続いて、結果的に得られたベクターは、酵母S.セレビシエ発現系の形質転換に用いられる。
酵母S.セレビシエにおける一般的発現
酵母での発現に適合性のある発現ベクターを、酢酸リチウム形質転換、エレクトロポレーション、または当技術分野で公知の、およびまたはSambrook, Fritsch, and Maniatis. 1989. "Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd edition," volumes 1-3およびAusubel et al. 2000. Massachusetts General Hospital and Harvard Medical School "Current Protocols in Molecular Biology," volumes 1-4に記載されたような他の方法により、酵母S.セレビシエに形質転換導入することができる。発現ベクターを形質転換によって酵母S.セレビシエ株DXY1、D88、またはBXP10に導入し、個々の形質転換体を、例えば、10mL YEPD(1%w/v酵母抽出物、2%w/vペプトン、2%w/vデキストロース)中にて30℃で3日間増殖させ、細胞を60時間の増殖の後に定常期の段階で収集することができる。上清は、3000gで10分間、細胞を除去することによって収集される。
酵母S.セレビシエにおけるアルブミン融合物から発現されるアルブミン融合タンパク質の一般的精製
好ましい態様において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療用タンパク質またはその部分の成熟形態(例えば、インスリンまたはインスリン類似体の成熟形態)のN末端またはC末端のいずれかと融合されたHSAの成熟形態を含む。本発明の1つの態様において、本発明のアルブミン融合タンパク質はさらに、発現のために用いられる宿主の分泌経路において新生融合ポリペプチドを導くシグナル配列を含む。1つの好ましい態様においては、シグナル配列によってコードされるシグナルペプチドが除去され、成熟アルブミン融合タンパク質が培地中に直接分泌される。本発明のアルブミン融合タンパク質は、好ましくは、MAF、INV、Ig、フィビュリンB、クラステリン、インスリン様増殖因子結合タンパク質4、キメラ性HSA/MAFリーダー配列を非限定的に含む変異体HSAリーダー配列、または当技術分野で公知である他の異種シグナル配列を非限定的に含む、異種シグナル配列(例えば、特定の治療用タンパク質の非ネイティブ性シグナル配列)を含む。好ましい態様において、本発明の融合タンパク質はさらに、N末端メチオニン残基を含む。断片および/または改変体を含む、これらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチドも本発明の範囲に含まれる。
哺乳動物細胞トランスフェクションのための一般的構築物の作製
哺乳動物細胞株における発現に適合性のあるアルブミン融合構築物の作製
アルブミン融合構築物を、哺乳動物細胞培養系において用いるための発現ベクター中に作製することができる。当技術分野で公知の標準的方法(例えば、PCR増幅、制限酵素消化および連結)により、哺乳動物発現ベクター中のHSAのN末端またはC末端に、治療用タンパク質をコードするDNAをクローニングすることができる。ひとたび発現ベクターが構築されれば、哺乳動物発現系へのトランスフェクションを行うことができる。適したベクターは当技術分野で公知であり、これには例えば、pC4ベクター、および/またはLonza Biologics,Inc.(Portsmouth, NH)より入手可能なベクターが非限定的に含まれる。
pC4:HSA(ATCC寄託番号PTA-3277)を用いて、治療用タンパク質部分が成熟アルブミン配列に対してC末端にあるアルブミン融合構築物を作製することができる。例えば、治療用タンパク質またはその断片もしくは変異体をコードするDNAを、ベクターのBsu 36I制限酵素認識部位とAsc I制限酵素認識部位との間にクローニングすることができる。Bsu 36IおよびAsc Iにクローニングする際には、酵母ベクター系へのクローニングに用いるのと同じプライマーデザインを利用することができる(実施例2参照)。
pC4:HSA(ATCC寄託番号PTA-3277)を用いて、治療用タンパク質部分が成熟アルブミン配列のN末端にクローニングされたアルブミン融合構築物を作製することができる。例えば、それ自体のシグナル配列を有する治療用タンパク質をコードするDNAを、pC4:HSAのBam HI(または、Hind III)部位とCla I部位との間にクローニングすることができる。Bam HI部位またはHind III部位のいずれかにクローニングする場合には、治療用タンパク質をコードするDNAの翻訳開始コドンの前にコザック配列(
)を含めることが好ましい。治療用タンパク質がシグナル配列を有しないならば、治療用タンパク質をコードするDNAは、pC4:HSAのXho I部位とCla I部位の間にクローニングされてもよい。Xho I部位を用いる場合には、以下の例示的な5'および3' PCRプライマーを用いることができる:
哺乳動物細胞株における一般的発現
哺乳動物細胞株における発現に適合性のある発現ベクター中に作製したアルブミン融合構築物を、リン酸カルシウム沈殿、リポフェクタミン、エレクトロポレーション、または当技術分野で公知の、および/またはSambrook, Fritsch, and Maniatis. 1989. "Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd edition"およびAusubel et al. 2000. Massachusetts General Hospital and Harvard Medical School "Current Protocols in Molecular Biology," volumes 14に記載された他のトランスフェクション法により、適切な細胞株にトランスフェクトすることができる。続いて、発現ベクター中の選択マーカーによって決定されるスクリーニング因子の存在により、トランスフェクトされた細胞を選択する。
哺乳動物細胞株におけるアルブミン融合構築物から発現されたアルブミン融合タンパク質の一般的精製
好ましい態様において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療用タンパク質またはその部分の成熟形態(例えば、インスリンまたはインスリン類似体の成熟形態)のN末端またはC末端のいずれかと融合したHSAの成熟形態を含む。本発明の1つの態様において、本発明のアルブミン融合タンパク質はさらに、発現のために用いられる宿主の分泌経路において新生融合ポリペプチドを導くシグナル配列を含む。1つの好ましい態様においては、シグナル配列によってコードされるシグナルペプチドが除去され、成熟アルブミン融合タンパク質が培地中に直接分泌される。本発明のアルブミン融合タンパク質は、好ましくは、MAF、INV、Ig、フィビュリンB、クラステリン、インスリン様増殖因子結合タンパク質4、キメラ性HSA/MAFリーダー配列を非限定的に含む変異体HSAリーダー配列、または当技術分野で公知である他の異種シグナル配列を非限定的に含む、異種シグナル配列(例えば、特定の治療用タンパク質の非ネイティブ性シグナル配列)を含む。好ましい態様において、本発明の融合タンパク質はさらに、N末端メチオニン残基を含む。断片および/または改変体を含む、これらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチドも本発明の範囲に含まれる。
CHO細胞上清または一過性トランスフェクションを受けた293T細胞上清からのアルブミン融合タンパク質の精製は、リン酸ナトリウム緩衝液およびリン酸塩濃度勾配溶出を用いた陰イオン性HQ樹脂による最初の捕獲、それに続く塩勾配溶出を用いたBlue SepharoseFFカラムでのアフィニティークロマトグラフィーを含む。Blue Sepharose FFは、主なBSA/フェチュイン混入物を除去する。リン酸塩勾配を用いたPoros PI 50樹脂によるさらなる精製により、エンドトキシン混入物を除去および低下させること、ならびにアルブミン融合タンパク質を濃縮することができる。
NS0細胞上清由来のアルブミン融合タンパク質の精製は、Q-Sepharose陰イオン交換クロマトグラフィー、それに続く段階溶出を用いたSP-セファロース精製、その後の段階溶出を用いたPhenyl-650M精製、最終的にはダイアフィルトレーションを含みうる。
構築物ID 2250、HSA-Insulin(GYG)の作製
構築物ID 2250、pSAC35.HSA.INSULIN(GYG).F1-N62は、酵母S.セレビシエ発現ベクターpSAC35中にクローニングされた、32位にTyrを有する合成一本鎖長時間作用型インスリン類似体(INSULIN(GY32G))のアミノ末端と融合されたネイティブ性HSAリーダー配列を含む完全長HSAを含むHSA-INSULIN(GYG)融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GYG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの部分的に重複するプライマーを用いてPCRで作製した。プロインスリンのプロセシングの必要性をなくし、かつ一本鎖タンパク質の適正なフォールディングを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のC-ペプチドに対応する配列を、インスリン成長因子1(「IGF-1」)のC-ドメイン(
)によって置き換えた。この配列を酵母S.セレビシエにおける発現のためにコドン最適化した。このPCR断片を消化し、Bsu 36I/Asc Iで消化したpScNHSA中にサブクローニングした。続いて、Not I断片をpSAC35プラスミド中にサブクローニングした。構築物ID番号2250は、合成一本鎖形態のINSULIN(GYG)のアミノ末端と融合した完全長HSA(ネイティブなHSAリーダー配列を含む)をコードする。
32 INSULIN(GYG)-1
)によって置き換えられた。本発明の1つの態様において、本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質は、さらに、発現のために用いられる宿主の分泌経路において新生融合ポリペプチドを導くシグナル配列を含む。1つのさらに好ましい態様においては、シグナル配列によってコードされるシグナルペプチドが除去され、成熟INSULINアルブミン融合タンパク質が培地中に直接分泌される。本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質は、好ましくは、MAF、INV、Ig、フィビュリンB、クラステリン、インスリン様増殖因子結合タンパク質4、キメラ性HSA/MAFリーダー配列を非限定的に含む変異体HSAリーダー配列、または当技術分野で公知である他の異種シグナル配列を非限定的に含む、異種シグナル配列を含む。1つの好ましい態様において、本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質はさらに、ネイティブ性INSULINを含む。さらなる好ましい態様において、本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質は、さらにN末端メチオニン残基を含む。その断片および/または改変体を含む、これらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチドも、本発明の範囲に含まれる。
酵母S.セレビシエにおける発現
構築物2250は、当技術分野で公知の方法によって酵母S.セレビシエ中に形質転換導入することができる(実施例3を参照)。発現レベルは、一次抗体として抗HSA血清を用いるイムノブロット検出によって調べることができる。
酵母S.セレビシエにおいて、構築物ID番号2250から発現された分泌性のINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載したように精製することができる。このアルブミン融合タンパク質のN末端シークエンシングにより、HSAの成熟形態のアミノ末端に対応する配列DAHKSが得られるはずである。
方法
構築物2250によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下における3T3-L1脂肪細胞でのグルコース取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、以下に記載したように実施した。INSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を試験するために用いうる当技術分野で公知の他のアッセイには、グリコーゲン合成キナーゼ-3(GSK-3)を介したL6ラット筋芽細胞増殖アッセイ、ならびにラットリンゴ酸デヒドロゲナーゼプロモーター(rMEP)-SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)-SEAPレポーター、脂肪酸合成(FAS)-SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)-SEAPレポーターを含むH4IIeレポーターアッセイが非限定的に含まれる。
構築物2250によってコードされるインスリンアルブミン融合タンパク質を発現する形質転換された酵母S.セレビシエに由来する上清により、3T3-L1脂肪細胞におけるグルコース取り込み/輸送活性が実証された(図18を参照)。
方法
構築物2250によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下における、膵管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定するため、および/またはインスリン産生RIN-M β細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイは、以下に見出し「膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロアッセイ」を付して述べたようにして実施することができる。
構築物ID 2255、Insulin(GYG)-HSAの作製
構築物ID 2255、pSAC35.INSULIN(GYG).F1-N62.HSAは、酵母S.セレビシエ発現ベクターpSAC35中にクローニングされた、32位にTyrを有する合成一本鎖長時間作用型インスリン類似体(INSULIN(GY32G))のアミノ末端と融合され、さらに、成熟型HSAと融合されたHSAキメラリーダー配列を含むINSULIN(GYG)-HSA融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GYG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの部分的に重複するプライマーを用いてPCRで作製した。プロインスリンのプロセシングの必要性をなくし、かつ一本鎖タンパク質の適正なフォールディングを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列を、インスリン成長因子1(「IGF-1」)のCドメイン(GY32GSSSRRAPQT)によって置き換えた。この配列を酵母S.セレビシエにおける発現のためにコドン最適化した。このPCR断片をSal I/Cla Iで消化し、Xho I/Cla Iで消化したpScCHSA中にサブクローニングした。続いて、Not I断片をpSAC35プラスミド中にサブクローニングした。構築物ID番号2255は、合成一本鎖形態のINSULIN(GYG)のアミノ末端の後にHSAの成熟形態が続いて融合した、HSAのキメラ性リーダー配列をコードする。
33 INSULIN(GYG)-3
)によって置き換えられた。本発明の1つの態様において、本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質はさらに、発現のために用いられる宿主の分泌経路において新生融合ポリペプチドを導くシグナル配列を含む。1つのさらに好ましい態様においては、シグナル配列によってコードされるシグナルペプチドが除去され、成熟INSULINアルブミン融合タンパク質が培地中に直接分泌される。本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質は、好ましくは、MAF、INV、Ig、フィビュリンB、クラステリン、インスリン様増殖因子結合タンパク質4、キメラ性HSA/MAFリーダー配列を非限定的に含む変異体HSAリーダー配列、または当技術分野で公知である他の異種シグナル配列を非限定的に含む、異種シグナル配列を含む。1つの好ましい態様において、本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質はさらに、ネイティブなINSULINを含む。さらなる好ましい態様において、本発明のINSULINアルブミン融合タンパク質は、さらにN末端メチオニン残基を含む。その断片および/または改変体を含む、これらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチドも、本発明の範囲に含まれる。
酵母S.セレビシエにおける発現
構築物2255は、当技術分野で公知の方法によって酵母S.セレビシエ中に形質転換導入することができる(実施例3を参照)。発現レベルは、一次抗体として抗HSA血清を用いるイムノブロット検出によって調べることができる。
酵母S.セレビシエにおいて、構築物ID番号2255から発現された分泌性のINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載したように精製することができる。発現および精製されたアルブミン融合タンパク質のN末端シークエンシングにより、合成一本鎖長時間作用型インスリン類似体(INSULIN(GY32G))のアミノ末端に対応するFVNQHが得られるはずである。
方法
構築物2255によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下における3T3-L1脂肪細胞でのグルコース取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、以下に記載したように実施した。INSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を試験するために用いうる当技術分野で公知の他のアッセイには、グリコーゲン合成キナーゼ-3(GSK-3)を介したL6ラット筋芽細胞増殖アッセイ、ならびにラットリンゴ酸デヒドロゲナーゼプロモーター(rMEP)-SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)-SEAPレポーター、脂肪酸合成(FAS)-SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)-SEAPレポーターを含むH4IIeレポーターアッセイが非限定的に含まれる。
方法
構築物2255によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下における、膵管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定するため、および/またはインスリン産生RIN-M β細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイは、以下に見出し「膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロアッセイ」を付して述べたようにして実施することができる。
構築物ID 2276、HSA-インスリン(GGG)の作製
構築物ID 2276、pSAC35.HSA.INSULIN(GGG).F1-N58は、酵母S.セレビシエ発現ベクターpSAC35中にクローニングされた、32位にGlyを有する合成一本鎖長時間作用型インスリン類似体(INSULIN(GG32G))のアミノ末端と融合されたネイティブなHSAリーダー配列を含む完全長HSAを含む、HSA-INSULIN(GGG)融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GGG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの部分的に重複するプライマーを用いてPCRで作製した。プロインスリンのプロセシングの必要性をなくし、かつ一本鎖タンパク質の適正なフォールディングを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列を、合成リンカーGG32GPGKRによって置き換えた。この配列を酵母S.セレビシエにおける発現のためにコドン最適化した。このPCR断片を消化し、Bsu 36I/Asc Iで消化したpScNHSA中にサブクローニングした。続いて、Not I断片をpSAC35プラスミド中にサブクローニングした。構築物ID番号2276は、合成一本鎖形態のINSULIN(GGG)のアミノ末端と融合したネイティブなHSAリーダー配列を含む完全長HSAをコードする。
34 INSULIN(GGG)-5
INSULIN(GGG)-6
酵母S.セレビシエにおける発現
構築物2276は、当技術分野で公知の方法によって酵母S.セレビシエ中に形質転換導入することができる(実施例3を参照)。発現レベルは、一次抗体として抗HSA血清を用いるイムノブロット検出によって調べることができる。
酵母S.セレビシエにおいて、構築物ID番号2276から発現された分泌性のINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載したように精製することができる。N末端シークエンシングにより、HSAの成熟形態のアミノ末端に対応する配列DAHKSが得られるはずである。
方法
構築物2276によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下における3T3-L1脂肪細胞でのグルコース取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、以下に記載したように実施した。INSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を試験するために用いうる当技術分野で公知の他のアッセイには、グリコーゲン合成キナーゼ-3(GSK-3)を介したL6ラット筋芽細胞増殖アッセイ、ならびにラットリンゴ酸デヒドロゲナーゼプロモーター(rMEP)-SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)-SEAPレポーター、脂肪酸合成(FAS)-SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)-SEAPレポーターを含むH4IIeレポーターアッセイが非限定的に含まれる。
構築物2276によってコードされるインスリンアルブミン融合タンパク質を発現する形質転換された酵母S.セレビシエに由来する上清により、3T3-L1脂肪細胞におけるグルコース取り込み/輸送活性が実証された(図18を参照)。
方法
構築物2276によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下における、膵管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定するため、および/またはインスリン産生RIN-M β細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイは、以下に見出し「膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロアッセイ」を付して述べたようにして実施することができる。
構築物ID 2278、インスリン(GGG)-HSAの作製
構築物ID 2278、pSAC35.INSULIN(GGG).HSAは、酵母S.セレビシエ発現ベクターpSAC35中にクローニングされた、32位にGlyを有する合成一本鎖長時間作用型インスリン類似体(INSULIN(GG32G))のアミノ末端と融合されたHSAのHSAキメラ性リーダー配列を含む、INSULIN(GGG)-HSA融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GGG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの部分的に重複するプライマーを用いてPCRで作製した。プロインスリンのプロセシングの必要性をなくし、かつ一本鎖タンパク質の適正なフォールディングを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列を、合成リンカー(GG32GPGKR)によって置き換えた。この配列を酵母S.セレビシエにおける発現のためにコドン最適化した。このPCR断片をSal I/Cla Iで消化し、Xho I/Cla Iで消化したpScCHSA中にサブクローニングした。続いて、Not I断片をpSAC35プラスミド中にサブクローニングした。構築物ID番号2278は、合成一本鎖形態のINSULIN(GGG)のアミノ末端の後にHSAの成熟形態が続いて融合した、HSAのキメラ性リーダー配列をコードする。
、INSULIN(GGG)-8、
。
酵母S.セレビシエにおける発現
構築物2278は、当技術分野で公知の方法によって酵母S.セレビシエ中に形質転換導入することができる(実施例3を参照)。発現レベルは、一次抗体として抗HSA血清を用いるイムノブロット検出によって調べることができる。
酵母S.セレビシエにおいて、構築物ID番号2278から発現された分泌性のINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載したように精製することができる。発現および精製されたアルブミン融合タンパク質のN末端シークエンシングにより、合成一本鎖長時間作用型インスリン類似体(INSULIN(GG32G))のアミノ末端に対応するFVNQHが得られるはずである。
方法
構築物2278によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下における3T3-L1脂肪細胞でのグルコース取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、以下に記載したように実施した。INSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を試験するために用いうる当技術分野で公知の他のアッセイには、グリコーゲン合成キナーゼ-3(GSK-3)を介したL6ラット筋芽細胞増殖アッセイ、ならびにラットリンゴ酸デヒドロゲナーゼプロモーター(rMEP)-SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)-SEAPレポーター、脂肪酸合成(FAS)-SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)-SEAPレポーターを含むH4IIeレポーターアッセイが非限定的に含まれる。
方法
構築物2278によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下における、膵管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定するため、および/またはインスリン産生RIN-M β細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイは、以下に見出し「膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロアッセイ」を付して述べたようにして実施することができる。
インスリンアルブミン融合タンパク質に関する適応症
上記のインビトロアッセイからの結果は、インスリンアルブミン融合タンパク質が、高血糖症、インスリン抵抗性、インスリン欠乏、高脂血症、高ケトン血症、ならびに糖尿病、1型および2型の糖尿病の治療、予防および/または診断のために有用であることを示している。
寄託された試料からの選択されたcDNAクローンの単離
本発明のアルブミン融合構築物の多くは、表3に示されているようにATCCに寄託されている。アルブミン融合構築物は、以下の発現ベクターのいずれか1つを含みうる:酵母S.セレビシエ発現ベクターpSAC35、哺乳動物発現ベクターpC4、または哺乳動物発現ベクターpEE12.1。
第1に、当技術分野で公知の方法を用いて、構築物の配列に対応するポリヌクレオチドプローブを用いて寄託されたプラスミドDNAの試料をスクリーニングすることによって、アルブミン融合構築物を直接単離することができる。例えば、30〜40ヌクレオチドを有する特定のポリヌクレオチドを、報告された配列に従ってApplied Biosystems DNA合成装置を用いて合成することができる。オリゴヌクレオチドは、例えば、T4ポリヌクレオチドキナーゼを用いて32P-γ-ATPで標識し、ルーチン的な方法に従って精製することができる(例えば、Maniatis et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, Cold Spring, N.Y. (1982))。所定のATCC寄託物からのアルブミン融合構築物を、上述したように、例えば、ベクター供給業者によって提供されるか、または上に引用した関連刊行物もしくは特許中に提供される、当業者に公知の手法を用いて適切な宿主(例えば、XL-1 Blue(Stratagene))に形質転換導入する。その形質転換体を、プレート当たり約150個の形質転換体(コロニー)の密度になるまで、1.5%寒天プレート(適切な選択薬剤(例えば、アンピシリン)を含む)上にプレーティングする。これらのプレートを、細菌コロニースクリーニングのためのルーチン的な方法(例えば、Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Edit., (1989), Cold Spring Harbor Laboratory Press, ページ1.93から1.104まで)または当業者に公知の他の技術に従って、ナイロン膜を用いてスクリーニングする。
または、所定のアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを、例えば、所定のアルブミン融合タンパク質をコードするDNAに対する5'側および3'側の寄託されたアルブミン融合構築物に対してハイブリダイズする17〜20ヌクレオチドの2つのプライマーを使用することによって、寄託されたアルブミン融合構築物の試料から増幅させることもできる。ポリメラーゼ連鎖反応は、ルーチン的な条件下で、例えば、0.5μgの上記cDNAテンプレートとの25μlの反応混合物中で実施する。好都合な反応混合物は、1.5〜5mM MgCl2、0.01%(w/v)ゼラチン、各20μMのdATP、dCTP、dGTP、dTTP、25pmolの各プライマーおよび0.25単位のTaqポリメラーゼである。35サイクルのPCR(94℃、1分間の変性;55℃、1分間のアニーリング;72℃、1分間の伸長)を、Perkin-Elmer Cetus自動化サーマルサイクラーを用いて行う。増幅産物をアガロースゲル電気泳動によって分析し、予想される分子量を有するバンドを切り出して精製する。PCR産物が選択された配列であることを、サブクローニングおよびDNA産物のシークエンシングによって検証する。
[3H]-2-デオキシグルコース取り込みアッセイ
脂肪、骨格筋および肝臓はインスリン感受性組織である。インスリンは、これらの組織へのグルコース取り込み/輸送を賦活化させることができる。脂肪および骨格筋の場合には、インスリンは、特化した細胞内区画から細胞表面へのグルコース輸送体4分子(GLUT4)のトランスロケーションを最終的に導くシグナル伝達を惹起する。ひとたび細胞表面上に達すると、GLUT4はグルコース取り込み/輸送を可能にする。
多くの脂肪関連細胞株および筋肉関連細胞株を、糖尿病の治療に関して列挙された任意の1つまたは複数の治療薬の組み合わせの非存在下または存在下において、グルコース取り込み/輸送活性について試験することができる。特に、3T3-L1マウス線維芽細胞およびL6マウス骨格筋細胞は、それぞれ3T3-L1脂肪細胞および筋管に分化させて、[3H]-2-デオキシグルコース取り込みアッセイのための適切なインビトロモデルとして役立てることができる(Urso et al., J Biol Chem, 274(43): 30864-73 (1999);Wang et al.,J Mol Endocrinol, 19(3): 241-8 (1997);Haspel et al., J Membr Biol, 169 (1): 4553 (1999);Tsakiridis et al., Endocrinology, 136(10): 4315-22 (1995))。手短に述べると、2×105細胞/100μLの脂肪細胞または分化L6細胞を、分化後培地中にある、処理された、すなわち50μg/mLのポリ-L-リジンでコートされた96ウェル組織培養「TC」プレートに移し、5%CO2中にて37℃で一晩インキュベートする。細胞をまず無血清低グルコースDMEM培地で1回洗浄し、続いて1nMのインスリンの非存在下または存在下で、100μL/ウェルの同じ培地および100μL/ウェルの緩衝液または糖尿病の治療に関して列挙された任意の1つまたは複数の治療薬、例えば、1nM、10nM、および100nMという種々の濃度の本発明の治療薬の組み合わせのいずれかとともに37℃で16時間欠乏状態におく。プレートを100μL/ウェルのHEPES緩衝食塩水で3回洗浄する。10μMの標識[3H]-2-デオキシグルコース(Amersham,#TRK672)および10□Mの非標識2-デオキシグルコース(SIGMA, D-3179)の存在下で、インスリンをHEPES緩衝化食塩水に添加して37℃で30分間おく。対照として、インスリンの非存在下であることを除いて同じ条件を実施する。非特異的な取り込みを測定するために、別のウェルに最終濃度10μMのサイトカラシンB(SIGMA,C6762)を100μL/ウェルで添加する。細胞をHEPES緩衝化食塩水で3回洗浄する。標識性、すなわち10μMの[3H]-2-デオキシグルコース、および非標識性、すなわち10μMの2-デオキシグルコースを室温で添加して10分間おく。細胞を冷リン酸緩衝食塩水「PBS」で3回洗浄する。0.2N NaOHを150μL/ウェルで添加し、続いて室温で20分間振盪しながらインキュベートすることによって細胞を溶解させる。続いて、試料をシンチレーションバイアルに移し、それに5mLのシンチレーション液を添加する。バイアルをβ-シンチレーション計数器で計数する。インスリンが存在しないか存在するかに違いのある二通りの条件における取り込みを、以下の式を用いて決定する:[(1分間当たりのインスリン計数「cpm」-非特異的cpm)/(インスリンなしのcpm-非特異的cpm)]。平均応答は、脂肪細胞および筋管に対する対照のそれぞれ約5倍および3倍の限度内に含まれる。
細胞を、T-75cm2フラスコ中で完全に集密化させる。培地を除去し、25mLの分化前培地に交換して48時間おく。細胞は5%CO2、湿度85%にて37℃でインキュベートする。48時間後に分化前培地を除去し、25mLの分化培地に交換して48時間おく。細胞を再び5%CO2、湿度85%にて37℃でインキュベートする。48時間後に培地を除去し、30mLの分化後培地に交換する。分化後培地は、14〜20日間、または完全な分化が達成されるまで維持する。培地は2〜3日毎に交換する。ヒト脂肪細胞はZen-Bio, INC(#SA-1096)から購入することができる。
膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロアッセイ
GLP-1は時間依存的および用量依存的な様式でラット膵臓管上皮細胞株ARIPの分化を誘導し、それに伴ってIslet Duodenal Homeobox-1(IDX-1)およびインスリンのmRNAレベルも上昇することが最近示されている(Hui et al., 2001, Diabetes, 50(4): 785-96)。続いてIDX-1は、GLP-1レセプターのmRNAレベルを上昇させる。
RIN-M細胞
これらの細胞は、American Type Tissue Culture Collectionから入手可能である(ATCC細胞株番号CRL-2057)。RIN-M細胞株は、放射線照射により誘導された移植可能なラット島細胞腫瘍に由来する。この株は腫瘍のヌードマウス異種移植片から樹立された。この細胞は、島ポリペプチドホルモンを産生および分泌し、L-ドーパデカルボキシラーゼ(アミン前駆体の取り込みおよび脱炭酸化、すなわちAPUD活性を有する細胞に関するマーカー)を産生する。
これらは、American Type Tissue Culture Collectionから入手可能な上皮形態を有する膵臓外分泌細胞である(ATCC細胞株番号CRL-1674)。参考文献:Jessop, N. W. and Hay, R. J., "Characteristics of two rat pancreatic exocrine cell lines derived from transplantable tumors," In Vitro 16: 212, (1980);Cockell, M. et al., "Identification of a cell-specific DNA-binding activity that interacts with a transcriptional activator of genes expressed in the acinar pancreas," Mol. Cell. Biol. 9: 24642476, (1989);Roux, E., et al. "The cell-specific transcription factor PTF1 contains two different subunits that interact with the DNA" Genes Dev. 3: 1613-1624, (1989);およびHui, H., et al., "Glucagon-like peptide 1 induces differentiation of islet duodenal homeobox-1-positive pancreatic ductal cells into insulin-secreting cells," Diabetes 50: 785-796 (2001)も参照されたい。
RIN-M細胞株は、10%ウシ胎仔血清(Hyclone, #SH30088.03)を含むRPMI 1640培地(HyClone, #SH300027.01)中で増殖させ、6〜8日毎に1:3〜1:6の比で継代する。培地は3〜4日毎に交換する。
細胞を、96ウェルプレート中に4000個/ウェルで播種し、集密度50%になるまで48〜72時間培養する。細胞を100μL/ウェルの血清を含まない培地に交換する。48〜72時間のインキュベーションの後に、血清および/または本発明の治療薬(例えば、本発明のアルブミン融合タンパク質ならびにそれらの断片および変異体)をウェルに加える。インキュベーションをさらに36時間継続する。[3H]-チミジン(5〜20Ci/mmol)(Amersham Pharmacia, #TRK120)を、1マイクロキュリー/Sマイクロリットルに希釈する。36時間のインキュベーションの後に、1ウェル当たり5マイクロリットルを加えてさらに24時間おく。冷リン酸緩衝食塩水「PBS」で1回穏やかに洗浄することによって反応を終結させる。続いて、100マイクロリットルの10%氷冷TCAによって細胞を4℃で15分間固定する。PBSを除去し、200マイクロリットルの0.2N NaOHを加える。プレートを、撹拌しながら室温で1時間インキュベートする。溶液をシンチレーションバイアルに移し、水溶液に適合性のある5mLのシンチレーション液を加えて激しく混合する。バイアルをβシンチレーション計数器で計数する。陰性対照としては緩衝液のみを用いる。陽性対照としては胎仔子ウシ血清を用いる。
糖尿に関するアッセイ
糖尿(すなわち、尿中の過剰な糖分)は、糖尿病の疾病状態の指標を得るために容易にアッセイすることができる。正常な患者試料と比較した場合の患者試料における過剰な尿は、IDDMおよびNIDDMの症状である。IDDMおよびNIDDMを有する患者の治療の有効性は、その結果として尿中の過剰なグルコースの量が減少することによって示される。IDDMおよびNIDDMのモニタリングに関する1つの好ましい態様においては、当技術分野で公知の手法を用いて、患者からの尿試料をグルコースの存在についてアッセイする。ヒトにおける糖尿は、100ml当たり100mgを超える尿中グルコース濃度によって定義される。糖尿を示す患者における過剰な糖レベルは、血液試料を採取して血清グルコースをアッセイすることによって、さらにより正確に測定することができる。
NODマウスにおける糖尿病の発生
雌性NOD(非肥満性糖尿病)マウスは、ヒトで認められるものに類似した経過をたどるIDDMを示すことによって特徴づけられるが、この疾患は雄性NODマウスよりも雌性NODマウスにおいてより顕著である。本明細書では以後、他に指定する場合を除き、「NODマウス」という用語は、雌性NODマウスのことを指す。NODマウスは、慢性自己免疫疾患によって引き起こされるβ細胞の進行性の崩壊を有する。このため、NODマウスは正常血糖(euglycemia)または正常な血糖レベルを有して生を始める。しかし、約15〜16週齢までにはNODマウスは高血糖になり始め、このことはそのマウスの大部分の膵臓β細胞の崩壊、およびそれに対応して膵臓が十分なインスリンを産生できなくなったことを示す。したがって、この疾患の原因および進行はいずれもヒトIDDM患者と同様である。
NODマウスの組織学的検査
NODマウスからの組織試料の組織学的検査により、本発明の組成物および/または本発明の組成物と糖尿病に対する他の治療薬との併用が、膵臓内のβ細胞の相対濃度を高める能力を実証することができる。実験方法は以下の通りである:
インスリン作用における関与を立証するインビトロH4IIe-SEAPレポーターアッセイ
さまざまなH4IIeレポーター
H4IIe/rMEP-SEAP:ラットから単離されたリンゴ酸酵素プロモーター(rMEP)は、インスリン経路にあるPPAR-γエレメントを含む。このレポーター構築物は、肝臓H4Ile細胞株に安定にトランスフェクトされる。
増殖培地は、10%ウシ胎仔血清(FBS)、10%仔ウシ血清、1% NEAA、1×ペニシリン/ストレプトマイシン、および0.75mg/mLのG418(H4IIe/rFAS-SEAPおよびH4IIe/SREBP-SEAPの場合)または0.50mg/mLのG418(H4IIe/rMEP-SEAPの場合)を含む。H4IIe/PEPCK-SEAPの場合、増殖培地は10% FBS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、15mMのHEPES緩衝食塩水および0.50mg/mLのG418からなる。
96ウェルプレートに対して、100μL/ウェルの増殖培地中にある細胞75,000個/ウェルを播種し、対数増殖期の細胞が接着するまでおく。増殖培地を200μL/ウェルのアッセイ培地に置き換えることによって細胞を48時間、欠乏状態におく(H4IIe/PEPCK-SEAP細胞の場合は、0.5μMデキサメサゾンを含むアッセイ培地を100μL/ウェルで加え、約20時間インキュベートする)。その後にアッセイ培地を100μL/ウェルの新鮮なアッセイ培地と交換し、本発明の治療薬(例えば、本発明のアルブミン融合タンパク質ならびにその断片および変異体)を発現する、トランスフェクトさせた細胞株から得た細胞上清の50μLアリコートをそのウェルに加える。エンプティベクターをトランスフェクトさせた細胞株からの上清を陰性対照として用いる。ウェルに10nMおよび/または100nMのインスリンを添加したものを陽性対照として用いる。48時間のインキュベーション後に馴化培地を収集して、SEAP活性を測定する(Phospha-Light Systemプロトコール、Tropix #BP2500)。手短に述べると、希釈緩衝液中に試料を1:4で希釈して、内因性の非胎盤形態のSEAPを不活性化するために65℃で30分間インキュベートする。希釈した試料の50μLアリコートを、非胎盤性SEAPアイソザイムに対して活性のある阻害薬の混合物を含む50μLのSEAPアッセイ緩衝液と混合し、さらに5分間インキュベートする。Emerald発光増強剤中に1:20に希釈したCSPD化学発光基質の50μLアリコートをその混合物に加えて、15〜20分間インキュベートする。Dynexプレート照度計でプレートを読み取る。
HA-ホルモン融合タンパク質(インスリン、LH、FSHなど)の調製
インスリンなどの関心対象のホルモンのcDNAは種々の手段によって単離することができ、これには限定的ではないが、いずれも標準的な方法を用いる、cDNAライブラリーからのもの、一連の部分的に重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるRT-PCRによる、またはPCRによるものが含まれる。これらのタンパク質のヌクレオチド配列はいずれも公知であり、例えばGenBankなどの公開データべースで入手可能である。cDNAは、HAのcDNAを含むベクター中へのcDNAのクローニングのために、オリゴヌクレオチドリンカーを用いうるような制限部位が作製されるように、5'末端および3'末端で調整することができる。これはN末端にあってもC末端にあってもよく、スペーサー配列を用いても用いなくともよい。ホルモンcDNAをpPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSAまたはpC4:HSAなどのベクター中にクローニングし、続いてそこから完全な発現カセットを切り出して、酵母におけるアルブミン融合タンパク質の発現が可能になるようにプラスミドpSAC35中に挿入する。続いて、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を培地から収集し、精製して、その生物活性について試験することができる。哺乳動物細胞株における発現のためには、用いる発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを利用する点を除き、同様の手順を採用する(実施例1を参照)。続いて、この発現カセットを切り出して、哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適したプラスミド中に挿入する。
アルブミン融合タンパク質の細菌発現
細菌シグナル配列を含む、本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、挿入断片を合成するために、DNA配列の5'末端および3'末端に対応するPCRオリゴヌクレオチドプライマーを用いて増幅する。インサートをコードするポリヌクレオチドを増幅するために用いられるプライマーは、増幅産物を発現ベクター中にクローニングするために、好ましくは、BamHIおよびXbaIなどの制限部位をプライマーの5'末端に含むべきである。例えば、BamHIおよびXbaIは、細菌発現ベクターpQE-9(Qiagen,Inc., Chatsworth, Calif.)の制限酵素部位に対応する。このプラスミドベクターは、抗生物質耐性(Ampr)、細菌の複製起点(ori)、IPTG調節性プロモーター/オペレーター(P/O)、リボソーム結合部位(RBS)、6-ヒスチジンタグ(6-His)および制限酵素クローニング部位をコードする。
哺乳動物細胞におけるアルブミン融合タンパク質の発現
本発明のアルブミン融合タンパク質を哺乳動物細胞において発現させることができる。典型的な哺乳動物発現ベクターは、mRNAの転写の開始を媒介するプロモーターエレメント、タンパク質コード配列、ならびに転写の終了および転写産物のポリアデニル化のために必要なシグナルを含む。そのほかのエレメントには、エンハンサー、コザック配列、ならびにRNAスプライシングのための供与部位と受容部位に挟まれた介在配列が含まれる。高効率の転写は、SV40由来の初期および後期プロモーター、レトロウイルス(RSV、HTLVI、HIVIなど)由来の長末端反復配列(LTR)、ならびにサイトメガロウイルス(CMV)の初期プロモーターにより達成される。しかし、細胞エレメントを使用することもできる(例えば、ヒトアクチンプロモーター)。
トランスジェニック動物
本発明のアルブミン融合タンパク質を、トランスジェニック動物において発現させることもできる。マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、モルモット、ブタ、ミニブタ、ヤギ、ヒツジ、ウシならびに非ヒト霊長動物、例えばヒヒ、サルおよびチンパンジーを非限定的に含む任意の種の動物を用いて、トランスジェニック動物を作製することができる。1つの特定的な態様においては、本明細書に記載のまたは当技術分野で公知の別の手法を用いて、遺伝子治療プロトコールの一部としてヒトにおいて本発明の融合タンパク質を発現させる。
インスリン、IGF-I、グラルギンおよびアルブミン-インスリン融合タンパク質(IN101NHYおよびIN100NHY)のマイトジェン活性をL6細胞において評価した。L6細胞(ATCC、CRL-1458)を、96ウェルプレートに、0.5%FBS DMEM培地中にて0.1x105個/100μLウェルでプレーティングした。指定濃度のインスリン、IGF-I、グラルギン(Lantus(登録商標)、Aventis)およびアルブミン融合タンパク質を添加して、37℃で2日間インキュベートした。細胞数は、CellTiter-Glo(商標)(Promega, Madison, WI, USA)を製造元の指示に従って用いて測定した。すべての処置は3回ずつ行い、データはPrizm(登録商標)(GraphPad, San Diego, CA)を用いて解析した。結果は図4に提示されている。最大の増殖の50%が観察される有効濃度(EC50)を算出した。結果は表1に提示されている。これらの実験の結果は、B鎖/A鎖連結配列がアルブミン-インスリン融合タンパク質のマイトジェン活性に影響を及ぼすことを示している。
レポーター活性によって測定したインスリン受容体結合活性は、脂肪酸シンターゼプロモーター(FAS)のインスリン受容体賦活化に依存しており、ステロール応答性(およびインスリン応答性)エンハンサー結合タンパク質(SREBP)をインスリン、グラルギンおよびアルブミン-インスリン融合タンパク質(IN101NHYおよびIN100NHY)に関して評価した。
)を、G418選択カセットが以前に付加されているpSEAP2-プロモーター(Clontech)に組み入れることによって作製した。H4IIE細胞(ATCC, CRL-1548)にこれらのレポーターをトランスフェクトし、G418耐性ならびにインスリン応答性SEAP活性に関してスクリーニングした。アッセイのためには、細胞を18〜24時間にわたって血清欠乏状態におき、続いて、治療用化合物をさまざまな濃度で含む新鮮な培地を添加した。48時間のインキュベーション後に、馴化培地を収集し、Phospha-LIGHTTMシステム(Applied Biosystems)を製造元の指示に従って用いてSEAP活性を測定した。すべての処置は3回ずつ行い、データはPrizm(登録商標)(GraphPad, San Diego, CA)を用いて解析した。結果は図5に提示されており、これはアルブミン融合タンパク質がインスリンおよびグラルギンと同様の結合活性を示すことを示している。
グラルギンならびにアルブミン融合タンパク質IN100NHYおよびIN101NHYを、皮下注射によって6週齡BalbCマウス(n=8/群)に投与した。血糖レベルは手持ち式Freestyle(商標)血糖モニターを用いて所定の時間に測定し、その結果は図6に提示されている。実験期間を通じてマウスには食餌を自由摂取させた。グラルギンと比較して、アルブミン-インスリン融合タンパク質はより長寿命のインスリン活性を示し、これは注射から約2〜36時間後の期間にグルコースレベルがより低いことによって示されている。
実施例1〜11に記載した方法を用いて、表2の中の以下のB鎖/A鎖連結配列を含む、アルブミン-インスリン融合タンパク質の発現のためのベクターを調製した。
アルブリン(IN100NHY、C-ペプチド=GGGPGKR)のマイトジェン活性を、ネイティブなインスリンおよび他のインスリン類似体のマイトジェン活性と比較した(表3)。
アルブリン(IN100NHY)の薬物動態をマウスにおいて評価した(図7)。マウスにおけるアルブリンの半減期はほぼ6時間であることが観察された。ヒトにおいて予想されるアルブリン(IN100NHY)の薬物動態プロファイルを、48時間毎の投薬を基にしてモデル化した(図8)。この投薬間隔により、アルブリン(IN100NHY)の血漿レベルの低いピーク/トラフ比が達成されると考えられる。投薬開始から約10日後までには、定常状態レベルが達成される。薬物のそれ以上の蓄積は観察されるべきでない。
正常マウスにおいてアルブリン(IN100NHY)の薬力学をレベミルと比較した。等モル量のレベミルまたはアルブリン(IN100NHY)を皮下投与した(0.25mg/kgレベミルに対して3mg/kgアルブリン(IN100NHY)、または1.25mg/kgレベミルに対して15mg/kgアルブリン(IN100NHY))。アルブリン(IN100NHY)の長時間持続する効果が観察された(図9)。アルブリン(IN100NHY)の単回皮下投与は、ほぼ1時間までに血糖値を低下させ、この効果は8〜12時間持続したが、レベミルの等モル皮下投与は血糖のより急峻な低下およびより急速なリバウンドを引き起こした。アルブリン(IN100NHY)およびレベミルの等モル投与によって観察された最大の血糖低下はおよそ同じであったが、アルブリン(IN100NHY)の観察された効果はほぼ3倍長く持続した。
ラットにおける肺吹送および静脈内投薬後のアルブリン-Gの薬物動態および薬力学について決定した。
薬物動態:平均血清濃度時間プロファイルは図10に提示されている。すべての動物個体に関して、mg/kgベースで実際に投与された用量を薬物動態分析に用いた。平均薬物動態パラメーターは、IV(静脈内)群については表5に、IS(肺吹送)群については表6に提示されている。
A 終期パラメーターの決定のための試料が得られたのは1匹の動物個体のみであった。Cmax=最高血清中濃度;Cl=クリアランス;Vss=定常状態での分布容積の推算値;Vz=分布容積;AUC0-∞=ゼロ時間から無限時間までの血清中濃度曲線下面積。
[(Wt投薬前の充填チャンバー−Wt投薬後のチャンバー)×%ロード]÷BWT(kg)
a 動物20、1.08mg/kgの推定用量を受けた。該動物のPKを解析したが、用量群に対する平均およびSDの算出には含めていない。
C1/F=血管外投与後の見かけのクリアランス、Vz/F=見かけの分布容積、F=生物学的利用能、MRT=平均滞留時間。
平均AUC 0-∞ /各用量レベルでの吹送後の用量
平均AUC0-∞/すべての用量レベルでの静脈内注射後の用量
1)アルブリン-Gのより高いCmaxは、より大きな血糖低下率(より大きなEmax)の予測となるか?。
2)アルブリン-Gに関するより大きなAUC0-∞はより大きなEmaxの予測となるか。
3)アルブリン-Gのより高いCmaxは、効果に関するより大きなAUC(アルブリン-Gに起因する血清グルコース時間濃度曲線の低下(AUEC))の予測となるか?
4)アルブリン-Gのより大きなAUC0-8hはより大きなAUECの予測となるか?
[(グルコース(時間)−グルコース(投与前))/グルコース(投与前)]*100
b この動物個体からのデータは、血清中濃度曲線からこの用量の少なくとも一部は血管外にあったことが示されたため、大部分のPK算出に含めなかった。消失半減期を推算するのに十分なポイントがあり、これはこの用量で他の動物個体で認められるものと並行するように思われる。
NC-算出せず
Claims (14)
- インスリン活性を有し、かつ、インスリン類似体のN末端、C末端、または両末端と融合したアルブミンまたはその変異体を含む融合タンパク質であって、インスリン類似体が式-B(1-30)-X-A(1-21)-を有し、式中、XはGGGPGKRであるアミノ酸配列を有するポリペプチドである、融合タンパク質。
- マイトジェン活性を示さないか、もしくは、IGF-Iを基準として50%を超えないマイトジェン活性を示す、請求項1記載の融合タンパク質。
- (a)アルブミンまたはその変異体が、インスリン類似体のN末端と融合されている;
(b)アルブミンまたはその変異体が、インスリン類似体のC末端と融合されている;または、
(c)アルブミンまたはその変異体が、インスリン類似体のN末端およびC末端と融合されている、
請求項1〜2のいずれか一項記載の融合タンパク質。 - N末端リーダー配列またはシグナル配列をさらに含む、請求項1〜3のいずれか一項記載の融合タンパク質。
- N末端リーダー配列またはシグナル配列が、
(a)アルブミンリーダー配列、インスリンリーダー配列、MPIF-1シグナル配列、スタニオカルシンシグナル配列、インベルターゼシグナル配列、酵母接合因子αシグナル配列、K.ラクティス(K. lactis)キラー毒素リーダー配列、免疫グロブリンIgシグナル配列、フィビュリン(Fibulin)B前駆体シグナル配列、クラスタリン前駆体シグナル配列、インスリン様増殖因子結合タンパク質4シグナル配列、酸ホスファターゼ(PHO5)リーダー、MFoz-1のプレ配列、Oグルカナーゼ(BGL2)のプレ配列、S.ディアスタティクス(S. diastaticus)グルコアミラーゼII分泌リーダー配列;S.カールスベルゲンシス(S. carlsbergensis)αガラクトシダーゼ(MEL1)分泌リーダー配列;カンジダグルコアミラーゼリーダー配列;バキュロウイルス発現系に用いるためのgp67シグナル配列;およびS.セレビシエ(S. cerevisiae)インベルターゼ(SUC2)リーダーからなる群より選択される;または、
(b)
ハイブリッドシグナル配列
(
);HSA/MFα-1ハイブリッドシグナル配列
(
);K.ラクティスキラー/MFα-1融合リーダー配列
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);HSAのプレ-プロ領域の変異体
(
);改変HSAリーダー
(
);改変HSAリーダー
(
);改変HSA(A14)リーダー
(
);改変HSA(S14)リーダー
(
)、改変HSA(G14)リーダー
(
);改変HSA(G14)リーダー
(
);コンセンサスシグナル配列
(
);K.ラクティスキラー毒素プレプロ配列
(
);および、イヌリナーゼ配列
(
)からなる群より選択される、
請求項4記載の融合タンパク質。 - 請求項1〜5のいずれか一項記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
- 請求項6記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 請求項7記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
- 請求項8記載の宿主細胞を発酵させる段階を含む、アルブミン-インスリン融合タンパク質を調製するための方法。
- 請求項1〜5のいずれか一項記載の融合タンパク質と薬学的添加剤とを含む、薬学的組成物。
- (a)エアロゾル投薬形態;
(b)鼻送達のために製剤化されているエアロゾル投薬形態;
(c)肺送達のために製剤化されているエアロゾル投薬形態;
(d)鼻送達および肺送達のために製剤化されているエアロゾル投薬形態;
(e)液体エアロゾル投薬形態;
(f)乾燥粉末エアロゾル投薬形態;
(g)噴射剤を利用するpMDIに用いるために製剤化されているエアロゾル投薬形態;
(h)非CFC噴射剤である噴射剤を利用するpMDIに用いるために製剤化されているエアロゾル投薬形態;
(i)噴霧乾燥粉末エアロゾル;
(j)凍結乾燥粉末エアロゾル;または、
(k)これらの任意の組み合わせ
からなる群より選択される投薬形態へ製剤される、請求項10記載の薬学的組成物。 - 液体エアロゾルが、以下からなる群より選択される平均直径を有する液滴を含む、請求項11記載の薬学的エアロゾル組成物:
(a)2〜10ミクロン;
(b)2〜6ミクロン;
(c)2ミクロン未満;
(d)5〜100ミクロン;および
(e)30〜60ミクロン。 - 医用薬剤を調製するための、請求項11記載の薬学的組成物の使用であって、医用薬剤が代謝障害の治療において有用である、使用。
- 代謝障害が糖尿病である、請求項13記載の使用。
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