JP2007161724A - 新規抗ｉｌ１３抗体およびその使用 - Google Patents

新規抗ｉｌ１３抗体およびその使用 Download PDF

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Abstract

【課題】喘息の気道に長期間投与されるとき活性なままである、ＩＬ１３の強力かつ特異的なインヒビターを提供すること。
【解決手段】本発明は、グリコシル化および非グリコシル化ヒトＩＬ１３の両方に高い親和性で特異的に結合し、マウスＩＬ１３を結合せず、そしてヒトＩＬ１３活性を約１：２（ＭＡｂ：ＩＬ１３）のモル比でヒトＩＬ１３活性を中和する抗ＩＬ１３抗体に関する。本発明はまた、喘息、アレルギー性喘息、非アレルギー性（内因性）喘息、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎、アレルギー性結膜炎、湿疹、じんま疹、食物アレルギー、慢性閉塞性肺疾患、潰瘍性大腸炎、ＲＳＶ感染、ブドウ膜炎、強皮症、または骨粗鬆症を含むアレルギー性疾患のような、ＩＬ１３媒介疾患の処置におけるこれら抗体の使用に関する。
【選択図】なし

Description

（発明の背景）
インターロイキン（ＩＬ）−１３は、多形質発現性Ｔヘルパー細胞サブクラス２（Ｔｈ２）サイトカインである。ＩＬ４と同様に、ＩＬ１３は、４α−らせん疎水性バンドルコアによって規定される三次構造を共有するタイプＩサイトカインのファミリーに属する。ＩＬ１３は、ＩＬ４と約３０％のアミノ酸配列相同性を有し、そしてＩＬ４の多くの性質を共有する（非特許文献１）。ＩＬ４とＩＬ１３との機能的類似性は、ＩＬ１３が、そのＩＬ１３レセプターα鎖−１（ＩＬ１３Ｒα１）への結合に引き続き、ＩＬ４レセプターα鎖（ＩＬ４Ｒ−α）を結合し得るという事実に帰因する（（非特許文献２）。ＩＬ４Ｒαは、ＩＬ４およびＩＬ１３によって活性化され、Ｊａｋ１依存性ＳＡＴ６リン酸化を生じる。ＩＬ４およびＩＬ１３の両方は、Ｂ細胞増殖を促進し、そしてＣＤ４０／ＣＤ４０Ｌ同時刺激との組み合わせでＩｇＧ４およびＩｇＥへのクラススイッチングを誘導する（非特許文献３および４）。
しかし、ＩＬ４とは異なり、ＩＬ１３は、ナイーブなＴ細胞のＴｈ２細胞への分化には関与しない（非特許文献５）。ＩＬ１３は、ＦｃεＲＩを上方制御し、そしてそれ故、肥満細胞のＩｇＥプライミングを支援する（非特許文献６）。単球／マクロファージにおいて、ＩＬ１３は、ＣＤ２３ならびにＭＨＣクラスＩおよびクラスＩＩ抗原の発現を上方制御し、ＦｃγおよびＣＤ１４の発現を下方制御し、そして抗体依存性細胞傷害性を阻害する（非特許文献７および８）。ＩＬ１３は、好酸球生存、活性化、および補充を促進するが、ＩＬ４はしない（非特許文献９、１０および１１）。ＩＬ１３はまた、平滑筋細胞、上皮細胞、内皮細胞および線維芽細胞のような非造血性細胞に対し重要な機能を顕示する。ＩＬ１３は、平滑筋の増殖およびコリン作用性の誘導収縮を増大する（非特許文献１２）。上皮細胞において、ＩＬ１３は、ケモカイン産生の潜在的なインデューサーである（非特許文献１３）、粘膜繊毛分化を改変し（非特許文献１４）、有繊毛上皮細胞の繊毛拍動頻度を低減し（非特許文献１５）、そして杯状細胞異形成を生じる（非特許文献１６および１７）。内皮細胞において、ＩＬ１３は、血管細胞接着分子１（ＶＣＡＭ−１）の潜在的なインデューサーであり、これは好酸球の補充に重要である（非特許文献１８）。ヒト皮膚線維芽細胞において、ＩＬ１３は、ヒト皮膚線維芽細胞における１型コラーゲン合成を誘導する（非特許文献１９）。
ＩＬ１３およびＩＬ４は、特定の機能的類似性を共有するが、疾患および遺伝子ノックアウトマウスの動物モデルにおける研究は、ＩＬ１３は、ＩＬ４とは別個の特有のエフェクター機能を所有することを示し、そしてＩＬ１３は、その他のＴｈ２サイトカインとは独立に、アレルギー性喘息のすべての特徴を誘導するために必要かつ十分である強力な証拠を提供している（非特許文献２０および２１）。ＩＬ１３は、喘息の症状にともなうエフェクター機能においてその他のＴｈ２サイトカインより重要な役割を演じ得る（非特許文献２２）。この論点は、ＩＬ１３レベルと、ＩＬ１３遺伝子における遺伝子多形と、疾患相関との間の強い関連によりヒト疾患において支持されている（非特許文献２３〜２７）。出現するデータは、ＩＬ１３が、好酸球およびＩｇＥ媒介事象を含む伝統的な経路を通じてよりも、粘膜性上皮細胞および平滑筋細胞に対するその作用を経由するアレルギー性応答の特徴を含むことを示唆している（非特許文献２８）。
喘息は、気道炎症、応答性亢進および閉塞を含む慢性肺疾患として記載されている。生理学的には、気道応答性亢進は、メタコリンまたはヒスタミンでの気管支刺激後の疾患気管支気流の減少によって証明されている。気道閉塞を誘発するその他の引き金は、冷気、運動、ウイルス上気道感染、喫煙、および呼吸アレルギーを含む。アレルゲンにともなう気管支応答性亢進は、多くの患者において、４〜８時間の気管支気流の減少をともなう後期ＩｇＥ媒介反応が続く、気管支気道における迅速な初期免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）−媒介性減少を誘導する。この初期応答は、ヒスタミン、ＰＧＤ２、ロイコトリエン、トリプターゼおよび血小板活性化因子（ＰＡＦ）のような炎症性物質の急性放出によって引き起こされ、その一方、後期応答は、デノボ合成された前炎症性サイトカイン（例えば、ＴＮＦα、ＩＬ４、ＩＬ３）およびケモカイン（例えば、ＭＣＰ−１およびＭＩＰ−１α）によって引き起こされる（非特許文献２９）。慢性喘息患者では、持続する肺症状が、Ｔｈ２細胞の高められた応答によって媒介される。Ｔｈ２サイトカインは、この疾患において重要な役割を演じると考えられており（非特許文献３０）、特に気道におけるＮＫ表現型を備えたＴｈ２細胞（ＮＫＴ）によって産生されたＩＬ１３およびＩＬ４が、げっ歯類における喘息のモデルで示されている（非特許文献３１）。喘息気道の肉眼病理学は、肺高度膨張、平滑筋肥大、網状板厚化、粘膜浮腫、上皮細胞痂皮、繊毛細胞破壊、および粘液腺過分泌を示す。顕微鏡的には、喘息は、気管支組織、気管支分泌物、および粘液中の増加した数の好酸球、好中球、リンパ球、および形質細胞の存在によって特徴付けられる。初期には、活性化されたＣＤ４＋Ｔ−リンパ球による血流から気道への白血球の補充がある。この活性化されたＴ−リンパ球はまた、好酸球、肥満細胞、およびリンパ球からの炎症性メディエーターの放出を行う。さらに、Ｔｈ２細胞は、ＩＬ４、ＩＬ５、ＩＬ９およびＩＬ１３を産生する。ＩＬ４は、ＩＬ１３と組み合わさって、ＩｇＭ抗体からＩｇＥ抗体へのスイッチを合図する。
アレルゲンによる膜結合ＩｇＥ分子の架橋は、肥満細胞を脱顆粒させ、ヒスタミン、ロイコトリエン、および気道炎症を永続させるその他のメディエーターを放出する。ＩＬ５は、好酸球の補充および活性化を活性化する。活性化された肥満細胞および好酸球はまた、炎症が永続化することを支援するそれらのサイトカインを生成する。肺組織への損傷、それに続く修復をともなう肺における炎症のこれらの繰り返しサイクルは、気道の長期間の構造的変化（「リモデリング」）を生成し得る。
中程度の喘息は、現在、毎日吸入されるクロモリンナトリウムまたはネドクロミルのような抗炎症性コルチステロイドまたは肥満細胞インヒビター＋必要に応じて（１日あたり３〜４回）吸入されるβ２−アゴニストで処置され、進展する症状またはアレルゲン喘息または運動誘導喘息を軽減する。クロモリンナトリウムおよびネドクロミルは、気管支痙攣および炎症をブロックするが、通常、アレルゲンまたは運動にともなう喘息についてのみ、そして代表的には、若年性喘息についてのみに有効である。吸引されたコルチコステロイドは、炎症、気道反応性亢進、および閉塞を改善し、そして多くの急性の悪化を低減する。しかし、これら影響が目に見えるまで少なくとも１ヶ月、そして顕著な改良が生じるまで１年までを要する。最も頻繁な副作用は、嗄声および口腔真菌感染、すなわち、カンジダ症である。より重篤な副作用が報告されており、例えば、部分的副腎抑制、成長阻害、および骨形成の低減があるが、より高用量の使用にのみともなう。ベクロメタゾン、トリアムシノロン、およびフルニソリドは、おそらく、類似の能力を有している；その一方、ブデソニドおよびフルチカゾンは、より強力でかつより少ない全身的副作用を有すると報告されている。
軽度の疾患をもつ患者でさえ、活性化Ｔ細胞、肥満細胞、および好酸球での粘膜および上皮の浸潤を含む、気道炎症を示す。Ｔ細胞および肥満細胞は、好酸球成長ならびにＩｇＥ抗体の成熟および産生を促進するサイトカインを放出し、そして、これらは、次いで、微小血管透過性を増加し、上皮を破壊し、そして神経反射および粘液分泌腺を刺激する。結果は、常に、喘鳴、せき、および呼吸困難によって顕示される、気道反応性亢進、気管支狭窄、および過剰分泌である。
伝統的には、喘息は、経口および吸入された気管支拡張薬で処置されている。これらの薬剤は喘息の症状を助けるが、基礎となる炎症にはなにもしない。喘息の病因における炎症の重要性の過去１０年間の認識は、コルチコステロイドの増加した使用に至ったが、多くの患者は、制御されない喘息を患い続けている。
Ｗｙｎｎ、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、２１：４２５（２００３）） Ｈｅｒｓｈｅｙ、Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１１１：６７７（２００３） Ｐｕｎｎｏｎｅｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、９０：３７３０（１９９３） Ｏｅｔｔｇｅｎら、Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１０７：４２９（２００１） Ｚｕｒａｗｓｋｉら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ、１５：１９（１９９４）） ｄｅ Ｖｒｉｅｓ、Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０２：１６５（１９９８）） ｄｅ Ｗａａｌ Ｍａｌｅｆｙｔら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５１：６３７０（１９９３） Ｃｈｏｍａｒａｔら、Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１７：１（１９９８） Ｈｏｒｉｅら、Ｉｎｔｅｍ、Ｍｅｄ．、３６：１７９（１９９７） Ｌｕｔｔｍａｎｎら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５７：１６７８（１９９６） Ｐｏｐｅら、Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１０８：５９４（２００１） Ｗｉｌｌｓ−Ｋａｒｐ、Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１０７：９（２００１） Ｌｉら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１６２：２４７７（１９９９） Ｌａｏｕｋｉｌｉら、Ｊ．Ｃｌｉ．Ｉｎｖｅｓｔ．、１０８：１８１７（２００１） Ｌａｏｕｋｌｉら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、１０８：１８１７（２００１） Ｚｈｕら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、１０３：７７９（１９９９） Ｇｒｕｎｉｇら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２８２：２２６１（１９９８）） Ｂｏｃｈｎｅｒら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５４：７９９（１９９５） Ｒｏｕｘら、Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．、１０３：４４４（１９９４）） Ｗｉｌｌｓ−Ｋａｒｐら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２８２：２２５８（１９９８） Ｗａｌｔｅｒら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６７：４６６８（２００１） Ｃｏｒｒｙ、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１１：６１０（１９９９） Ｗｉｌｌｓ−Ｋａｒｐ．ら、Ｒｅｓｐｉｒ．Ｒｅｓ．１：１９（２０００） Ｖｅｒｃｅｌｌｉら、Ｃｕｒ．Ｏｐｉｎ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、２：３８９（２００２） Ｈｅら、Ｇｅｎｅｓ Ｉｍｍｕｎｏｌ．、４：３８５（２００３） Ａｒｉｍａら、Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１０９：９８０（２００３） Ｌｉｕら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１１２：３８２（２００３） Ｗｉｌｌｓ−Ｋａｒｐら、Ｓｃｉ．、２８２：２２５８（１９９８） Ｂｕｓｓｅら：Ａｌｌｅｒｇｙ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ、Ｍｉｄｄｌｅｓｔｏｎ編、１１７３（１９９８） Ｌａｒｃｈｅら、Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１１１：４５０（２００３） Ａｋｂａｒｉら、Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄ．、９：５８２（２００３）。
ヒトにおける炎症性疾患、特に喘息を処置する重要性のために、より少ない副作用を有する新たな生物活性化合物が継続して求められている。喘息の気道に長期間投与されるとき活性なままである、ＩＬ１３の強力および特異的なインヒビターの開発は、喘息、ならびにその他のＩＬ１３−媒介疾患およびＩｇＥ媒介疾患における処置に対する新規なアプローチを提供する。
上記課題を解決するために、本発明は、以下のものを提供する。
（項目１）
グリコシル化ヒトＩＬ１３および非グリコシル化ヒトＩＬ１３の両方に特異的かつ高親和性で結合し、マウスＩＬ１３を結合せず、そして約１：２のモル比（ＭＡｂ：ＩＬ１３）でヒトＬＩ１３活性を中和する、抗体またはその抗原結合性フラグメント。
（項目２）
上記抗体が２２８Ｂ／Ｃであり、そしてＰＴＡ−５６５７で指定されるハイブリドーマによって産生される、項目１に記載の抗体。
（項目３）
項目２に記載の抗体と同じエピトープに結合する抗体。
（項目４）
上記抗体が２２８Ａ−４であり、そしてＰＴＡ−５６５６で指定されるハイブリドーマによって産生される、項目１に記載の抗体。
（項目５）
上記抗体が２２７−２６であり、そしてＰＴＡ−５６５４で指定されるハイブリドーマによって産生される、項目１に記載の抗体。
（項目６）
上記抗体が２２７−４３であり、そしてＰＴＡ−５６５５で指定されるハイブリドーマによって産生される、項目１に記載の抗体。
（項目７）
抗体であって、項目１に記載の抗体の軽鎖可変領域および重鎖可変領域由来の抗原結合性領域を含む、抗体。
（項目８）
上記抗体が配列番号３に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＬ配列、および配列番号４に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＨ配列を有する、項目７に記載の抗体。
（項目９）
上記抗体が配列番号５に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＬ配列、および配列番号６に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＨ配列を有する、項目７に記載の抗体。
（項目１０）
上記抗体が配列番号７に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＬ配列、および配列番号８に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＨ配列を有する、項目７に記載の抗体。
（項目１１）
２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３からなり、そしてそれぞれＡＴＴＣ寄託番号ＰＴＡ−５６５７、ＰＴＡ−５６５６、ＰＴＡ−５６５４、およびＰＴＡ−５６５５から指定される群から選択されるモノクローナル抗体を産生する、ハイブリドーマ細胞株。
（項目１２）
項目１に記載の抗体をコードする核酸を含む、細胞株。
（項目１３）
項目１に記載の抗体をコードする核酸を含む、ベクター。
（項目１４）
上記抗体が、モノクローナル抗体である、項目１の抗体。
（項目１５）
上記モノクローナル抗体が、ヒト抗体、キメラ抗体、またはヒト化抗体である、項目１４の抗体。
（項目１６）
項目１に記載の抗体、および生理学的に受容可能なキャリア、希釈剤、賦形剤、または安定化剤を含む、組成物。
（項目１７）
式：ＦＲＬ１−ＣＤＲＬ１−ＦＲＬ２−ＣＤＲＬ２−ＦＲＬ３−ＣＤＲＬ３−ＦＲＬ４を有するアミノ酸配列を含む可変軽鎖領域であって、ここで、ＦＲＬ１が配列番号２０〜２５のいずれか１つからなり；ＣＤＲＬ１が配列番号９９〜１０３のいずれか１つからなり；ＦＲＬ２が配列番号２９からなり；ＣＤＲＬ２が配列番号１０４〜１１４のいずれか１つからなり；ＦＲＬ３が配列番号３０〜５６のいずれか１つからなり；ＣＤＲＬ３が配列番号１１５〜１１６のいずれか１つからなり；そしてＦＲＬ４が配列番号５７〜５９からなる、可変軽鎖領域。
（項目１８）
配列番号３、５、７、９３、９５、９７、１４２、１４４、および１５０のいずれか１つを含む、可変軽鎖領域。
（項目１９）
定常領域をさらに含む、項目１７に記載の可変軽鎖領域。
（項目２０）
定常領域をさらに含む、項目１８に記載の可変軽鎖領域。
（項目２１）
式：ＦＲＨ１−ＣＤＲＨ１−ＦＲＨ２−ＣＤＲＨ２−ＦＲＨ３−ＣＤＲＨ３−ＦＲＨ４を有するアミノ酸配列を含む可変軽鎖領域であって、ここで、ＦＲＨ１が配列番号６０〜６６のいずれか１つからなり；ＣＤＲＨ１が配列番号１１７〜１２２のいずれか１つからなり；ＦＲＨ２が配列番号６７〜７５のいずれか１つからなり；ＣＤＲＨ２が配列番号１２３〜１３４のいずれか１つからなり；ＦＲＨ３が配列番号７６〜９０のいずれか１つからなり；ＣＤＲＨ３が配列番号１３５〜１４１のいずれか１つからなり；そしてＦＲＬ４が配列番号９１〜９２からなる、可変重鎖領域。
（項目２２）
配列番号４、６、８、９４、９６、９８、１４３、１４５、１４６、１４７、１４８および１４９のいずれか１つを含む、可変重鎖領域。
（項目２３）
定常領域の少なくともＣＨ１ドメインをさらに含む、項目２１に記載の可変重鎖領域。
（項目２４）
定常領域のＣＨ１ドメイン、ＣＨ２ドメインおよびＣＨ３ドメインをさらに含む、項目２３に記載の可変重鎖領域。
（項目２５）
上記定常領域が、ＩｇＧ抗体由来である、項目２４に記載の可変重鎖領域。
（項目２６）
上記ＩｇＧ抗体が、ＩｇＧ１抗体、ＩｇＧ２抗体、ＩｇＧ３抗体、またはＩｇＧ４抗体である、項目２５に記載の可変重鎖領域。
（項目２７）
定常領域の少なくともＣＨ１ドメインをさらに含む、項目２２に記載の可変重鎖領域。
（項目２８）
項目１７の可変軽鎖領域を含む抗体またはその抗原結合性フラグルメントであって、ここで、その抗体がＩＬ１３に特異的に結合する、抗体またはその抗原結合性フラグメント。
（項目２９）
項目２１の可変重鎖領域を含む抗体またはその抗原結合性フラグルメントであって、ここで、その抗体がＩＬ１３に特異的に結合する、抗体またはその抗原結合性フラグメント。
（項目３０）
項目２１に記載の重鎖領域を含む、項目２８に記載の抗体。
（項目３１）
配列番号１４２に提示されるアミノ酸配列を有する可変軽鎖領域、および配列番号１４３に提示されるアミノ酸配列を有する可変重鎖領域を含む、項目３０に記載の抗体。
（項目３２）
配列番号１５０に提示されるアミノ酸配列を有する可変軽鎖領域、および配列番号１５１に提示されるアミノ酸配列を有する可変重鎖領域を含む、項目３０に記載の抗体。
（項目３３）
上記抗体が、配列番号１５２に提示される配列を有する単鎖抗体である、項目１に記載の抗体。
（項目３４）
上記抗体が、単一ドメイン抗体である、項目１に記載の抗体。
（項目３５）
上記抗体が、抗原結合性フラグメントである、項目１に記載の抗体。
（項目３６）
上記抗原結合性フクラグメントが、Ｆａｂである、項目３５に記載の抗体。
（項目３７）
喘息症状を患う被験体を処置するための方法であって、その喘息症状を低減するために有効な量の項目１に記載の抗体を投与する工程を包含する、方法。
（項目３８）
上記抗体が、上記患者におけるＩＬ１３の活性を下方制御する、項目３７に記載の方法。
（項目３９）
上記抗体が、上記患者における気管支の応答性亢進を低減する、項目３８に記載の方法。
（項目４０）
上記抗体が、上記被験体の肺における好酸球増加症を低減する、項目３７に記載の方法。
（項目４１）
上記抗体が、静脈内、腹腔内、吸入、筋肉内、皮下および経口からなる群から選択される１つ以上の経路によって投与される、項目３７に記載の方法。
（項目４２）
上記抗体が、吸入によって投与される、項目４１に記載の方法。
（項目４３）
患者に、治療的に有効な量の項目１に記載の抗体を送達する吸入デバイス。
（項目４４）
サンプル中のインターロイキン−１３タンパク質を検出するための方法であって：項目３０に記載の抗体をサンプルに接触させる工程；および免疫反応の発生によりインターロイキン−１３を検出する工程を包含する、方法。
（項目４５）
上記サンプルが、患者から収集される、項目４４に記載の方法。
（項目４６）
患者におけるＩＬ１３の過剰発現を診断するための方法であって：
（ａ）患者からサンプルを得る工程；（ｂ）ＩＬ１３との免疫反応を可能にし得る条件下で、そのサンプルと、項目１に記載の抗体とを組み合わせる工程；および（ｃ）ＩＬ１３が、ＩＬ１３の通常レベルの発現に対して過剰発現されるか否かを決定する工程を包含する、方法。
（項目４７）
項目１に記載の抗体を産生する方法であって：ａ）グリコシル化ＩＬ１３部分および免疫原性部分を含む免疫原性化合物を産生する工程；ｂ）その免疫原性化合物を含む注射可能な溶液をリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）およびアジュバント中に調製する工程；ｃ）静脈内注射および腹腔内注射の組み合わせによって、その注射可能な溶液でマウスを免疫化する工程、ｄ）その免疫化マウスからの脾臓細胞を骨髄腫細胞と融合することによりハイブリドーマを産生する工程；ｅ）項目１に記載の抗体の特徴を有する抗体を産生するハイブリドーマを選択する工程；およびｆ）その抗体を単離する工程、を包含する、方法。
（項目４８）
組換え抗体分子、またはそのＩＬ１３結合性フラグメントであって：マウス抗−ＩＬ１３抗体由来の位置３１〜３５（ＣＤＲ１）、５０〜６５（ＣＤＲ２）および９５〜１０２（ＣＤＲ３）（Ｋａｂａｔ番号付け）にある非ヒトＣＤＲを含み、ここで、位置２７〜３０が、アミノ酸Ｇｌｙ２６、Ｐｈｅ２７、Ｓｅｒ２８、Ｌｅｕ２９、Ａｓｎ３０を有する少なくとも１つの抗体重鎖、またはそのＩＬ１３結合性フラグメント；およびマウス抗−ＩＬ１３抗体由来の位置２４〜３４（ＣＤＲ１）、５０〜５６（ＣＤＲ２）および８９〜９７（ＣＤＲ３）にある非ヒトＣＤＲを含む少なくとも１つの抗体軽鎖、またはそのＩＬ１３結合性フラグメント、ならびにモノクローナル抗体由来のフレームワーク領域を含む、組換え抗体分子、またはそのＩＬ１３結合性フラグメント。
（項目４９）
項目３０の抗体をコードするＤＮＡ配列。
（項目５０）
項目４９に記載のＤＮＡ配列を有するベクター。
（項目５１）
項目５０に記載のベクターを含む宿主細胞。
（項目５２）
患者においてＩｇＥ抗体産生を阻害するための方法であって、その患者にＩｇＥ抗体産生を阻害する有効量の項目１に記載の抗体を投与する工程、を包含する、方法。
（項目５３）
上記ＩｇＥ抗体産生の阻害が、気管支喘息を予防すること、アレルギー性鼻炎を予防すること、アレルギー性皮膚炎を予防すること、気管支喘息を処置すること、アレルギー性鼻炎を処置すること、じんま疹を処置すること、アナフィラキシーを予防すること、またはアトピー性皮膚炎を処置することを意図される、項目５２に記載の方法。
（項目５４）
患者におけるＩＬ１３媒介障害を処置する方法であって、その患者に、有効量の項目１に記載の抗体またはその抗原結合性フラグメントを投与する工程を包含し、ここで、その抗体またはその抗原結合性フラグメントが、ＩＬ１３のそのレセプターへの結合を阻害し、そしてそのインターロイキンのそのレセプターへの結合にともなう１つ以上の機能を阻害する、方法。
（項目５５）
上記障害が、アレルギー性喘息、非アレルギー性（内因性）喘息、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎、アレルギー性結膜炎、湿疹、じんま疹、食物アレルギー、慢性閉塞性肺疾患、潰瘍性大腸炎、ＲＳＶ感染、ブドウ膜炎、強皮症、または骨粗鬆症である、項目５４に記載の方法。
（項目５６）
患者においてＩｇＥ媒介障害を処置する方法であって、その患者に有効量の項目１に記載の抗体またはその抗原結合性フラグメントを投与する工程を包含し、ここで、その抗体またはその抗原結合性フラグメントが、ＩＬ１３のそのレセプターへの結合を阻害し、そしてそのインターロイキンのそのレセプターへの結合にともなう１つ以上の機能を阻害する、方法。
（項目５７）
哺乳動物において喘息の重篤度を低減する方法であって、その哺乳動物に、以下の特徴の少なくとも１つを有する抗ＩＬ１３モノクローナル抗体；約１×１０９と約１×１０１２Ｍとの間のＫＤでヒトＩＬ１３を結合する能力；インターロイキンＩＬ１３のＩＬ１３レセプターへの結合にともなう１つ以上の機能を阻害する能力；およびその抗体のマウスＩＬ１３を結合しない能力；の治療的に有効な量を投与する工程を包含する、方法。
（項目５８）
上記抗ＩＬ１３抗体が、吸入、全身的、ボーラス注射、または連続注入によって投与される、項目５２に記載の方法。
（項目５９）
上記抗ＩＬ１３抗体が、吸入、全身的、ボーラス注射、または連続注入によって投与される、項目５４に記載の方法。
（項目６０）
アミノ酸配列ＥＳＬＩＮＶＳＧ（配列番号１８）から本質的になるペプチド。
（項目６１）
アミノ酸配列ＹＣＡＡＬＥＳＬＩＮＶＳ（配列番号１９）から本質的になるペプチド。
（発明の要旨）
本発明は、グリコシル化ヒトＩＬ１３および非グリコシル化ヒトＩＬ１３の両方に特異的かつ高親和性で結合し；マウスＩＬ１３を結合せず、そして約１：２のモル比（ＭＡｂ：ＩＬ１３）でヒトＬＩ１３活性を中和する抗体に、少なくとも部分的に関連する。本発明にまた含まれるのは、上記抗体の軽鎖可変領域および／または重鎖可変領域由来の抗原結合性領域を含む抗体である。本発明の抗体はモノクローナルであり得、そしてモノクローナル抗体は、ヒト抗体、キメラ抗体、またはヒト化抗体であり得る。
これらの抗体の例は、２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３である。これら抗体を産生するハイブリドーマは、２００３年１１月２０日に、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ、１０８０１ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ２０１１０−２２０９に、それぞれ、受託番号ＰＴＡ−５６５７、ＰＴＡ−５６５６、ＰＴＡ−５６５４、およびＰＴＡ−５６５５の下で寄託された。
本発明は、配列番号３に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＬ配列、および配列番号４に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＨ配列を有する抗体；配列番号５に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＬ配列、および配列番号６に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＨ配列を有する抗体；および配列番号７に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＬ配列、および配列番号８に提示される抗体に少なくとも９５％相同であるＶＨ配列を有する抗体を含む。本発明はまた、組換え抗体分子、またはそのＩＬ１３結合性フラグメントを含み、これらは、マウス抗−ＩＬ１３抗体由来の位置３１〜３５（ＣＤＲ１）、５０〜６５（ＣＤＲ２）および９５〜１０２（ＣＤＲ３）（Ｋａｂａｔ番号付け）にある非ヒトＣＤＲを含み、ここで、位置２７〜３０が、アミノ酸Ｇｌｙ２６、Ｐｈｅ２７、Ｓｅｒ２８、Ｌｅｕ２９、Ａｓｎ３０（配列番号１８）を有する少なくとも１つの抗体重鎖、またはそのＩＬ１３結合性フラグメント；およびマウス抗−ＩＬ１３抗体由来の位置２４〜３４（ＣＤＲ１）、５０〜５６（ＣＤＲ２）および８９〜９７（ＣＤＲ３）にある非ヒトＣＤＲを含む少なくとも１つの抗体軽鎖、またはそのＩＬ１３結合性フラグメント、ならびにヒトモノクローナル抗体からのフレームワーク領域を含む。
本発明は、本発明の抗体のヒト抗原結合性抗体フラグメントを含み、このフラグメントとしては、Ｆａｂ、Ｆａｂ’およびＦ（ａｂ’）２、Ｆｄ、単鎖Ｆｖｓ（ｓｃＦｖ）、単鎖抗体、ジスルフィド結合Ｆｖｓ（ｓｄＦｖ）が挙げられるが、これらに限定されない。本発明はまた、ＶＬまたはＶＨドメインのいずれかを含む単一ドメイン抗体を含む。ｓｃＦｖの１つの例は、図２１中に描写され、配列番号１５２の配列を有する。
本発明は、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のヒト化配列を含む。これらのヒト化組換え抗体分子は、式：ＦＲＬ１−ＣＤＲＬ１−ＦＲＬ２−ＣＤＲＬ２−ＦＲＬ３−ＣＤＲＬ３−ＦＲＬ４を有するアミノ酸配列を含む可変重鎖領域を含み、ここで、ＦＲＬ１が配列番号２０〜２５のいずれか１つからなり；ＣＤＲＬ１が配列番号９９〜１０３のいずれか１つからなり；ＦＲＬ２が配列番号２９からなり；ＣＤＲＬ２が配列番号１０４〜１１４のいずれか１つからなり；ＦＲＬ３が配列番号３０〜５６のいずれか１つからなり；ＣＤＲＬ３が配列番号１１５〜１１６のいずれか１つからなり；そしてＦＲＬ４が配列番号５７〜５９からなり；そして式：ＦＲＨ１−ＣＤＲＨ１−ＦＲＨ２−ＣＤＲＨ２−ＦＲＨ３−ＣＤＲＨ３−ＦＲＨ４を有するアミノ酸配列を含む可変軽鎖領域を含み、ここで、ＦＲＨ１が配列番号６０〜６６のいずれか１つからなり；ＣＤＲＨ１が配列番号１１７〜１２２のいずれか１つからなり；ＦＲＨ２が配列番号６７〜７５のいずれか１つからなり；ＣＤＲＨ２が配列番号１２３〜１３４のいずれか１つからなり；ＦＲＨ３が配列番号７６〜９０のいずれか１つからなり；ＣＤＲＨ３が配列番号１３５〜１４１のいずれか１つからなり；そしてＦＲＨ４が配列番号９１〜９２からなる。この可変重鎖領域は、定常領域の少なくともＣＨ１ドメインまたは定常領域のＣＨ１、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインをさらに含み得る。この重鎖定常領域は、ＩｇＧ抗体を含み得、ここで、このＩｇＧ抗体は、ＩｇＧ１抗体、ＩｇＧ２抗体、ＩｇＧ３抗体、またはＩｇＧ４抗体である。
本発明はまた、組換え抗体分子を含み得、ここで、この可変軽鎖は、配列番号３、５、７、９３、９５、９７、１４２、１４４、および１５０のいずれか１つから選択され、そして可変重鎖は、配列番号４、６、８、９４、９５、９６、９８、１４３、１４５、１４６、１４７、１４８および１４９のいずれか１つから選択される。１つの特定の抗体は、配列番号１４２に提示される配列を有する可変軽鎖、および配列番号１４３に提示される配列を有する可変重鎖を含む。
本発明は、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３を産生するハイブリドーマ細胞株を含む。本発明は、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３をコードする核酸、これら抗体またはその鎖をコードする核酸を含む細胞株、およびこれら抗体またはその鎖をコードする核酸を含むベクターを含む。
本発明はまた、２２８Ｂ／Ｃ−１と同じエピトープを結合する抗体を含む。例示のポリペプチドは、配列番号１もしくはその改変体のすべてまたは一部分、またはアミノ酸１３がグルタミン酸からリジンに変更されている配列番号２を含む。本発明はまた、本発明の抗体によって認識されるエピトープに関する。エピトープペプチドは、ＥＳＬＩＮＶＳＧ（配列番号１８）またはＹＣＡＡＬＥＳＬＩＮＶＳ（配列番号１９）を本質的に含むか、またはそれらからなるペプチドを含む。
本発明は、請求項に記載の本発明による抗体を、薬学的に受容可能なキャリア、希釈剤、賦形剤、または安定化剤と組み合わせて含む組成物を含む。
本発明は、喘息症状を患う被験体を処置するための方法を含み、この喘息症状を低減するために有効な量の請求項に記載の本発明の抗体を、被験体（例えば、その必要のある被験体）に投与する工程を包含し、ここで、この抗体は、患者におけるＩＬ１３の活性を下方制御し得、この患者における気管支の応答性亢進を低減し、そして／または上記被験体の肺における好酸球増加症を低減する。本発明はまた、呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）の感染を阻害する方法を含み、この方法は、阻害量の請求項に記載の本発明の抗体を、被験体（例えば、その必要がある被験体）に投与する工程を包含する。
本発明の抗体は、静脈内経路、腹腔内経路、吸入経路、筋肉内経路、皮下経路および経口経路を含む１つ以上の経路によって投与され得る。本発明は、患者に、治療的に有効な量の請求項に記載の抗体を送達する吸入デバイスを含む。
本発明は、被験体、例えば、アレルギー性疾患を患う被験体において、インターロイキン−１３タンパク質を検出するための方法を含み、この方法は、例えば、請求項に記載の抗体をサンプルに接触させる工程；および免疫反応の発生によりインターロイキン−１３を検出する工程を包含する。被験体におけるＩＬ１３の過剰発現を診断するための方法もまた記載され、この方法は、（ａ）患者からサンプルを得る工程；（ｂ）このサンプルを、ＩＬ１３との免疫反応を可能にし得る条件下で、請求項に記載の抗体とを組み合わせる工程；および（ｃ）ＩＬ１３が、ＩＬ１３の通常レベルの発現に対して過剰発現されるか否かを決定する工程を包含する。
本発明は、請求項に記載の発明の抗体を産生する方法を含み、この方法は、：ａ）グリコシル化ＩＬ１３部分および免疫原性部分を含む免疫原性化合物を産生する工程；ｂ）この免疫原性化合物を含む注射可能な溶液をリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）およびアジュバント中に調製する工程；ｃ）静脈内注射および腹腔内注射の組み合わせによって、上記注射可能な溶液でマウスを免疫化する工程、ｄ）上記免疫化マウスからの脾臓細胞を骨髄腫細胞と融合することによりハイブリドーマを産生する工程；ｅ）請求項１に記載の抗体の特徴を有する抗体を産生するハイブリドーマを選択する工程；およびｆ）この抗体を単離する工程を包含する。
本発明は、患者においてＩｇＥ抗体産生を阻害するための方法を含み、この方法は、患者にＩｇＥ抗体産生を阻害する有効量の請求項に記載の発明による抗体を投与する工程を包含する。このＩｇＥ抗体産生の阻害は、気管支喘息、アレルギー性鼻炎、アレルギー性皮膚炎、およびアナフィラキシーを防ぎ得、そしてまた、気管支喘息、アレルギー性鼻炎、じんま疹、およびアトピー性皮膚炎を処置し得る。
本発明は、患者におけるＩＬ１３媒介障害を処置する方法を含み、この方法は、患者に、有効量の請求項に記載の発明による抗体またはその抗原結合性フラグメントを投与する工程を包含し、ここで、この抗体またはその抗原結合性フラグメントは、ＩＬ１３のそのレセプターへの結合を阻害し、そして上記インターロイキンの上記レセプターへの結合にともなう１つ以上の機能を阻害する。
本発明は、患者においてＩｇＥ媒介障害を処置する方法を含み、この方法は、患者に有効量の請求項に記載の発明の抗体またはその抗原結合性フラグメントを投与する工程を包含し、ここで、この抗体またはその抗原結合性フラグメントは、ＩＬ１３のそのレセプターへの結合を阻害し、そして上記インターロイキンの上記レセプターへの結合にともなう１つ以上の機能を阻害する。
本発明は、哺乳動物において喘息の重篤度を低減する方法を含み、この方法は、哺乳動物に、以下の特徴の少なくとも１つを有する抗ＩＬ１３モノクローナル抗体；約１×１０９と約１×１０１２Ｍとの間のＫＤでＩＬ１３を結合する能力；インターロイキンＩＬ１３のＩＬ１３レセプターへの結合にともなう１つ以上の機能を阻害する能力；およびこの抗体のマウスＩＬ１３を結合しない能力；の治療的に有効な量を投与する工程を包含する。
本発明によって企図されるＩＬ１３によって媒介される疾患および／または症状としては、アレルギー性喘息、非アレルギー性（内因性）喘息、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎、アレルギー性結膜炎、湿疹、じんま疹、食物アレルギー、慢性閉塞性肺疾患、潰瘍性大腸炎、ＲＳＶ感染、ブドウ膜炎、強皮症、または骨粗鬆症が挙げられるが、これらに限定されない。
（詳細な説明）
本発明は、本明細書中に記載される特定の方法、プロトコール、細胞株、ベクター、または試薬に限定されない。なぜなら、それらは変動し得るからである。さらに、本明細書中で用いられる用語法は、特定の実施形態のみを記載する目的のために用いられ、そして本発明の範囲を制限することは意図されない。本明細書および添付の請求項で用いられるとき、単数形「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」は、文脈が明瞭にそうでないことを指示しなければ、複数の参照を含み、例えば、「宿主細胞」への参照は、複数のこのような宿主細胞を含む。
そうでないことが規定されなければ、本明細書中で用いられるすべての技術的用語および科学的用語および任意の頭文字は、本発明の分野の当業者によって共通に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書中に記載されるのと類似または等価な任意の方法および材料が本発明の実施に用いられ得るが、例示の方法、デバイス、および材料が本明細書中に記載される。
本明細書で述べられるすべての特許および刊行物は、本発明とともに用いられ得るそれらの中で報告された、タンパク質、酵素、ベクター、宿主細胞および方法を記載かつ開示する目的のために、法律によって許容される範囲まで参考として本明細書中に援用される。しかし、本明細書中のいかなるものも、本発明が、先行発明によるこのような開示に対して先立つ権利をもたないことの是認として解釈されるべきでない。
（免疫原）
組換えＩＬ１３を用いてマウスを免疫化し、本発明のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを生成した。組換えＩＬ１３は、多くの供給元から市販される（例えば、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ、ＰｅｔｐｒｏＴｅｃｈ、Ｉｎｃ．、ＮＪ、およびＳａｎｏｆｉ Ｂｉｏ−Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ、Ｉｎｃ．、Ｔｅｒｖｏｓｅ、ＰＡ．を参照のこと）。あるいは、ＩＬ１３をコードする遺伝子またはｃＤＮＡは、プラスミドまたはその他の発現ベクター中にクローン化され、そして当業者に周知の方法に従って、多くの発現システムのいずれかで発現され得る。ＩＬ１３およびＩＬ１３の核酸配列をクローニングし、そして発現するする方法は周知である（例えば、米国特許第５，６５２，１２３号を参照のこと）。遺伝子コードの縮重のため、ＩＬ１３ポリペプチドをコードする複数のヌクレオチド配列が産生され得る。可能なコドン選択に基づいて組み合わせを選択することにより、ヌクレオチド配列を改変し得る。これらの組み合わせは、天然に存在するＩＬ１３ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列に適用されるような標準的なトリプレット遺伝子コードに従ってなされ得、そしてすべてのそのような改変が考慮されるべきである。これらポリペプチドの任意の１つが、ＩＬ１３に結合する抗体を生成するために動物の免疫化において用いられ得る。
この免疫原ＩＬ１３ポリペプチドは、有益であるとき、融合セグメントに付着されたＩＬ１３ポリペプチドを有する融合タンパク質として発現され得る。この融合セグメントは、しばしば、タンパク質精製を支援する。これは、例えば、この融合タンパク質がアフィニティクロマトグラフィーにより単離および精製されることを可能にすることによる。融合タンパク質は、このタンパク質のカルボキシ末端および／またはアミノ末端のいずれかに付着された融合セグメントを含むタンパク質をコードする融合核酸配列で形質転換された組換え細胞を培養することにより産生され得る。融合セグメントとしては、免疫グロブリンＦｃ領域、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、２価金属イオンに結合し得るポリ−ヒスチジンセグメント、およびマルトース結合性タンパク質が挙げられ得るが、これらに限定されない。
例示のポリペプチドは、配列番号１またはその改変体のすべてまたは一部分、あるいは、アミノ酸１３がＸａａである配列番号２を含み、そして野生型（ｗｔ）から、例えば、グルタミン酸からリジンに変更され得る。
ヒトＩＬ１３の変異体形態を含む融合タンパク質を用いて、本発明の抗体を生成した。ＩＬ１３のこの変異体形態は、このタンパク質の不活性形態を生じる単一変異を含んでいた（Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：２９９４（１９９９））。高親和性をもつ中和抗体を生成するために、この融合タンパク質は、免疫グロブリンＦｃ、詳細にはＩｇＧに融合された変異体ＩＬ１３を含み、そしてこの組換えタンパク質が自然にグリコシル化されるように哺乳動物細胞中で発現された。この融合タンパク質のＦｃ部分は、鍵となるエピトープを剥き出した立体配座構造を提供し得た。グリコシル化は、このエピトープの免疫原性を増大し得、この特定のエピトープに対する抗体の生成を可能にしている。
Ｅ．ｃｏｌｉ中で発現されたＩＬ１３ポリペプチドは、グリコシル化を欠き、そして試験された市販され入手可能な抗体は、このタンパク質を用いて生成されていた。本発明者らは、これら抗体（例えば、Ｒ＆Ｄ ＳｙｓｔｅｍｓおよびＰｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を試験し、そしてＥ．ｃｏｌｉ中で生成された免疫原で生成された抗体は、本発明の抗体によって結合されたエピトープと交差反応しないことを見出した。
（抗体生成）
本発明の抗体は、当該分野で公知の任意の適切な方法によって生成され得る。本発明の抗体は、ポリクローナル抗体を含み得る。ポリクローナル抗体を調製する方法は、当業者に公知である（Ｈａｒｌｏｗら、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、（Ｃｏｌｄ ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、第２版（１９８８））、これは、その全体が参考として本明細書中に援用される）。
例えば、上記に記載の免疫原は、種々の宿主動物に投与され得、この宿主動物としては、ウサギ、マウス、ラットなどが挙げられるが、これらに限定されない。上記抗原に特異的なポリクローナル抗体を含む血清の産生を誘導する。この免疫原の投与は、免疫剤、および所望される場合は、アジュバントの１つ以上の注射を必要とし得る。種々のアジュバントが、宿主の種に依存して免疫学的応答を増大するために用いられ得、そして、制限されずに、フロイント（完全および不完全）、水酸化アルミニウムのようなミネラルゲル、リゾレシチンのような表面活性物質、プルロニックポリオール、ポリアニオン、ペプチド、オイルエマルジョン、キーホールリムペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、および潜在的に有用なヒトアジュバント（例えば、ＢＣＧ（カルメット−ゲラン杆菌）およびＣｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐａｖｕｍ）が挙げられるが、これらに限定されない。採用され得るアジュバントのさらなる例としては、ＭＰＬ−ＴＤＭアジュバント（モノホスホリルリピドＡ、合成トレハロースジコリノミコレート）が挙げられる。免疫化プロトコールは、当該技術分野で周知であり、そして選択された動物宿主で免疫応答を惹起する任意の方法によって実施され得る。アジュバントもまた当該分野で周知である。
代表的には、免疫原（アジュバントありまたはなし）は、複数の皮下もしくは腹腔内注射、または筋肉内もしくはＩＶを通じて哺乳動物中に注射される。この免疫原は、ＩＬ１３ポリペプチド、融合タンパク質またはその改変体を含み得る。ポリペプチドの性質（すなわち、疎水性％、親水性％、安定性、正味の電荷、等電点など）に依存して、免疫化されている哺乳動物中で免疫原性であることが知られるタンパク質にこの免疫原を結合することが有用であり得る。このような結合としては、免疫原および免疫原性タンパク質の両方を、共有結合が形成されるように活性な化学的官能基を誘導体化することによる化学的結合か、または融合タンパク質を基礎にした方法によるか、または当業者に公知のその他の方法のいずれかが挙げられる。このような免疫原性タンパク質の例としては、キーホールリムペットヘモシアニン、卵アルブミン、血清アルブミン、ウシサイログロブリン、大豆トリプシンインヒビター、および混合Ｔヘルパーペプチドが挙げられるが、これらに限定されない。種々のアジュバントが、上記のように、免疫学的応答を増大するために用いられ得る。
本発明の抗体は、モノクローナル抗体を含む。モノクローナル抗体は、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ、Ｎａｔｕｒｅ、２５６：４９５（１９７５）および米国特許第４，３７６，１１０、Ｈａｒｌｏｗらによる、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、（Ｃｏｌｄ ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、第２版、補遣（１９８８））、Ｈａｍｍｅｒｌｉｎｇらによる、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｉｉｅｓ ａｎｄ Ｔ−Ｃｅｌｌ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ、Ｎ．Ｙ．、（１９８１））に記載のような記載のハイブリドーマ技法、またはその他の当業者に公知の方法を用いて調製され得る。モノクローナル抗体を産生するために採用され得る方法のその他の例としては、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技法（Ｋｏｓｂｏｒら、１９８３、Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｔｏｄａｙ ４：７２；Ｃｏｌｅら、１９８３、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８０：２０２６〜２０３０）、およびＥＢＶハイブリドーマ技法（Ｃｏｌｅら、１９８５、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ
Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ、Ｉｎｃ．、７７〜９６頁）が挙げられるが、これらに限定されない。このような抗体は、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＥ、ＩｇＡ、ＩｇＤを含む任意の免疫グロブリンクラス、およびそれらの任意のサブクラスであり得る。本発明のＭＡｂを生成するハイブリドーマは、インビトロまたはインビボで培養され得る。
代表的なハイブリドーマ技法を用いて、マウス、ヒト化マウス、ヒト免疫系をもつマウス、ハムスター、ウサギ、ラクダまたは任意のその他の適切な宿主動物のような宿主は、代表的には免疫原で免疫化され、ＩＬ１３に特異的に結合する抗体を生成、または生成し得るリンパ球を惹起する。あるいは、リンパ球は、インビトロで抗原を用いて免疫化され得る。
一般に、抗体産生性ハイブリドーマを作製する際に、ヒト起源の細胞が所望される場合、末梢血リンパ球（「ＰＢＬ」）用いられるか、または非ヒト哺乳動物供給源が所望される場合、脾臓細胞もしくはリンパ節細胞の用いられるかのいずれかである。これらリンパ球は、次いで、ポリエチレングリコールのような適切な融合剤を用いて不死化細胞株と融合され、ハイブリドーマ細胞を形成する（Ｇｏｄｉｎｇ、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ、Ａｃａｄｅｍｉｃ
Ｐｒｅｓｓ、（１９８６）、５９〜１０３頁）。不死化細胞は、通常、形質転換された哺乳動物細胞、特に、げっ歯類、ウシまたはヒト起源の骨髄腫細胞である。代表的には、ラットまたはマウス骨髄腫細胞株が採用される。これらハイブリドーマ細胞は、好ましくは、非融合の不死化細胞の成長または生存を阻害する１つ以上の物質を含む適切な培養培地中で培養され得る。例えば、親細胞が、酵素ヒポキサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＧＰＲＴまたはＨＰＲＴ）を欠く場合、このハイブリドーマのための培養培地は、代表的には、ＨＧＰＲＴ欠損細胞の成長を防ぐ物質、ヒポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジンを含む（「ＨＡＴ培地」）。
好ましい不死化細胞株は、効率的に融合し、選択された抗体産生性細胞による抗体の安定な高レベル発現を支持し、そしてＨＡＴ培地のような培地に感受性である細胞株である。より好ましい不死化細胞株は、マウス骨髄腫株であり、これは、例えば、Ｓａｌｋ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ Ｃｅｌｌ Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ Ｃｅｎｔｅｒ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、Ｃａｌｉｆ．およびＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ、Ｍａｎａｓｓａｓ、Ｖａ．から得られ得る。ヒト骨髄腫およびマウス−ヒトヘテロ骨髄腫細胞株もまた、ヒトモノクローナル抗体の産生のために用いられ得る（Ｋｏｚｂｏｒ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１３３：３００１（１９８４）；Ｂｒｏｄｅｕｒら、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ、Ｉｎｃ．、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、（１９８７）５１〜６３頁）。
ハイブリドーマ細胞が培養される培養培地は、次いで、ＩＬ１３に対して惹起されたモノクローナル抗体の存在についてアッセイされ得る。ハイブリドーマ細胞によって産生されたモノクローナル抗体の結合特異性は、例えば、免疫沈降により、またはラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）または酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩＳＡ）のようなインビトロ結合アッセイにより決定される。このような技法は、当該技術分野で公知であり、そして当業者の技術である。モノクローナル抗体のＩＬ１３に対する結合親和性は、例えば、Ｓｃａｔｃｈａｒｄ分析（Ｍｕｎｓｏｎら、Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、１０７：２２０（１９８０））によって決定され得る。
所望のハイブリドーマ細胞が識別された後、これらクローンは、限定希釈手順によってサブクローン化され、そして標準的な方法によって増殖される（Ｇｏｄｉｎｇ、上述）。この目的のための適切な培養培地としては、例えば、ダルベッコの改変イーグル培地およびＲＰＭＩ−１６４０が挙げられる。これらサブクローンにより分泌されるモノクローナル抗体は、例えば、プロテインＡ−セファロースヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル排除クロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、またはアフィニティークロマトグラフィーのような従来の免疫グロブリン精製手順によって、培養培地から単離または精製され得る。
モノクローナル抗体の産生のために当該分野には種々の方法が存在し、そしてそれ故、本発明は、それらの唯一のハイブリドーマの産生に限定されない。例えば、モノクローナル抗体は、米国特許第４，８１６，５６７号に記載のような組換えＤＮＡ法によって作製され得る。この文脈では、用語「モノクローナル抗体」は、単一の真核生物、ファージまたは原核クローン由来の抗体をいう。本発明のモノクローナル抗体をコードするＤＮＡは、従来手順（例えば、マウス抗体の重鎖および軽鎖、またはヒト、ヒト化、もしくはその他の供給源からのそのような鎖をコードする遺伝子に特異的に結合し得るオリゴヌクレオチドプローブを用いることにより）を用いて容易に単離かつ配列決定され得る。本発明のハイブリトーマ細胞は、このようなＤＮＡの好ましい供給源として機能する。一旦単離されると、このＤＮＡは、発現ベクター中に配置され得、これは、次いで、そうでなければ免疫グロブリンを産生しない、ＮＳ０細胞、サルＣＯＳ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、または骨髄腫細胞のような宿主細胞中に形質転換され、組換え宿主細胞におけるモノクローナル抗体の合成を得る。このＤＮＡはまた、例えば、相同なマウス配列の代わりにヒト重鎖および軽鎖定常ドメインのコード配列を置換することにより（米国特許第４，８１６，５６７号；Ｍｏｒｒｉｓｏｎら、上述）、または免疫グロブリンコード配列に、非免疫グロブリンポリペプチドのコード配列のすべてまたは一部分を共有結合することにより改変され得る。このような非免疫グロブリンポリペプチドは、本発明の抗体の定常ドメインを置換し得るか、または本発明の抗体の抗原結合性部位の可変ドメインを置換し得、キメラ２価抗体を生成する。
上記抗体は一価抗体であり得る。一価抗体を調製するための方法は、当該技術分野で周知である。例えば、１つの方法は、免疫グロブリン軽鎖および改変重鎖の組換え発現を含む。重鎖は、一般に、重鎖架橋を防ぐようにＦｃ領域中の任意の点で先欠けされ得る。あるいは、関係するシステイン残基は、別のアミノ酸残基で置換されるか、または架橋を防ぐように欠失される。
特異的エピトープを認識する抗体フラグメントは、公知の技法によって生成され得る。例えば、本発明のＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントは、（Ｆａｂフラグメントを産生するための）パパインまたは（Ｆ（ａｂ’）２フラグメントを産生するための）ペプシンのような酵素を用いて、免疫グロブリン分子のタンパク質分解切断によって産生され得る。Ｆ（ａｂ’）２フラグメントは、可変領域、軽鎖定常領域および重鎖のＣＨ１ドメインを含む。
ヒトにおける抗体のインビボ使用およびインビトロ検出アッセイを含むいくつかの使用のためには、キメラ、ヒト化、またはヒト抗体を用いることが好適であり得る。キメラ抗体は、抗体の異なる部分が、マウスモノクローナル抗体由来の可変領域およびヒト免疫グロブリン定常領域を有する抗体のような、異なる動物種に由来する分子である。キメラ抗体を産生するための方法は、当該技術分野で公知である。例えば、Ｍｏｒｒｉｓｏｎ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２９：１２０２（１９８５）；Ｏｉら、ＢｉｏＴｅｃｎｉｑｕｅｓ ４：２１４（１９８６）；Ｇｉｌｌｉｅｓら、（１９８９）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １２５：１９１〜２０２；米国特許第５，８０７，７１５号；同第４，８１６，５６７号；および同第４，８１６３９７号を参照のこと。これらは、それらの全体が参考として本明細書中に援用される。
ヒト化抗体は、非ヒト種からの１つ以上の相補性決定領域（ＣＤＲ）およびヒト免疫グロブリン分子からのフレームワーク（ＦＲ）を有する所望の抗原を結合する非ヒト種中で生成される抗体分子である。しばしば、ヒトフレームワーク領域中のフレームワーク残基は、抗原結合性を改変、好ましくは改善するためにＣＤＲドナー抗体から対応する残基で置換される。これらのフレームワーク置換基は、当該技術分野で周知の方法により同定され得、例えば、抗原結合のために重要なフレームワーク残基を同定するためにＣＤＲとフレームワーク残基との相互作用をモデリングすること、および特定の位置における異常なフレームワーク残基を同定するための配列比較による。（例えば、Ｑｕｅｅｎら、米国特許第５，５８５，０８９号；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら、Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３（１９８８）を参照のこと。これらは、それらの全体が参考として本明細書中に援用される）。抗体は、当該技術分野で公知の種々の技法を用いてヒト化され得、この技法としては、例えば、ＣＤＲグラフト化（ＥＰ ２３９，４００；ＰＣＴ公開ＷＯ ９１／０９９６７；米国特許第５，２２５，５３９号；同第５，５３０，１０１号；同第５，５８５，０８９号）、被膜（ｖｅｎｅｅｒｉｎｇ）または表面付け替え（ｒｅｓｕｒｆａｃｉｎｇ）（ＥＰ ５９２，１０６；ＥＰ ５１９，５９６；Ｐａｄｌａｎ、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｌｏｇｙ ２８（４／５）：４８９〜４９８（１９９１）；Ｓｔｕｄｎｉｃｋａら、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ７（６）：８０５〜８１４（１９９４）；Ｒｏｇｕｓｋａら、ＰＮＡＳ ９１：９６９〜９７３（１９９４））、および鎖シャフリング（米国特許第５，５６５，３３２号）が挙げられる。
一般に、ヒト化抗体は、それに、非ヒトである供給源からその抗体へ導入された１つ以上のアミノ酸残基を有する。これらの非ヒトアミノ酸残基は、しばしば、「輸入」残基と称され、これは、代表的には、「輸入」可変領域からとられる。ヒト化は、本質的に、Ｗｉｎｔｅｒおよび共同研究者の方法に従って（Ｊｏｎｅｓら、Ｎａｔｕｒｅ、３２１：５２２〜５２５（１９８６）；Ｒｅｉｃｈｍａｎｎら、Ｎａｔｕｒｅ、３３２：３２３〜３２７（１９８８）；Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２３９：１５３４〜１５３６（１９８８））、ヒト抗体の対応する配列にげっ歯類ＣＤＲまたはＣＤＲ配列を置換することにより実施され得る。従って、このような「ヒト化」抗体は、キメラ抗体であり（米国特許第４，８１６，５６７号）、ここで、インタクトより実質的に少ないヒト可変ドメインが、非ヒト種からの対応する配列によって置換される。実際、ヒト化抗体は、代表的には、いくつかのＣＤＲ残基および可能ないくつかのＦＲ残基が、げっ歯類抗体中の類似の部位から置換されているヒト抗体である。
完全にヒト抗体が、ヒト患者の治療的処置のために特に所望される。ヒト抗体は、当該技術分野で公知の種々の方法によって作製され得、これには、ヒト免疫グロブリン配列由来の抗体ライブラリーを用いる上記に記載のファージディスプレイ方法が含まれる。米国特許第４，４４４，８８７号および同第４，７１６，１１１号；およびＰＣＴ公開ＷＯ９８／４６６４５、ＷＯ９８／５０４３３、ＷＯ９８／２４８９３、ＷＯ９８／１６６５４、ＷＯ９６／３４０９６、ＷＯ９６／３３７３５、およびＷＯ９１／１０７４１；これらの各々は、その全体が本明細書中に参考として援用される。ＣｏｌｅらおよびＢｏｅｒｄｅｒらの技法もまたヒトモノクローナル抗体の調製のために利用可能である（Ｃｏｌｅら、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、Ａｌａｎ Ｒ．Ｒｉｓｓ、（１９８５）；およびＢｏｅｎｅｒら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１４７（１）：８６〜９５、（１９９１））。
ヒト抗体はまた、機能的な内因性免疫グロブリンを発現することはできないが、ヒト免疫グロブリン遺伝子を発現し得るトランスジェニックマウスを用いて産生され得る。例えば、ヒト重鎖および軽鎖免疫グロブリン遺伝子複合体は、マウス胚性幹細胞中にランダムに、または相同的組換えにより導入され得る。あるいは、ヒト可変領域、定常領域、および多様性領域は、ヒト重鎖遺伝子および軽鎖遺伝子に加え、マウス胚性幹細胞中に導入され得る。マウス重鎖免疫グロブリン遺伝子および軽鎖免疫グロブリン遺伝子は、相同的組換えによるヒト免疫グロブリン遺伝子座の導入と別個に、または同時に非機能的にされ得る。特に、ＪＨ領域の同型接合的な欠失は、内因性の抗体産生を防ぐ。これら改変された胚性幹細胞は増殖され、そして胚盤胞中にマイクロインジェクトされ、キメラマウスを生成する。このキメラマウスは、次いで、繁殖されてヒト抗体を発現する同型接合型子孫を生成する。このトランスジェニックマウスは、通常の様式で、選択された抗原、例えば、本発明のポリペプチドのすべてまたは一部で免疫化される。この抗原に対して惹起されたモノクローナル抗体は、免疫化されたトランスジェニックマウスから、従来のハイブリドーマ技術を用いて得られ得る。このトランスジェニックマウスによって宿されるヒト免疫グロブリン導入遺伝子は、Ｂ細胞分化の間に再配列し、そして次にクラススイッチングおよび体細胞変異を受ける。従って、このような技法を用いて、治療的に有用なＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭおよびＩｇＥ抗体を産生することが可能である。ヒト抗体を産生するためのこの技法の概説には、ＬｏｎｂｅｒｇおよびＨｕｓｚａｒ、Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３：６５〜９３（１９９５）を参照のこと。ヒト抗体およびヒトモノクローナル抗体を産生するためのこの技法、およびこのような抗体を産生するためのプロトコールの詳細な論議には、例えば、ＰＣＴ公開公報ＷＯ９８／２４８９３；ＷＯ９２／０１０４７；ＷＯ９６／３４０９６；ＷＯ９６／３３７３５；欧州特許第０ ５９８ ８７７号；米国特許第５，４１３，９２３号；同第５，６２５，１２６号；同第５，６３３，４２５号；同第５，５６９，８２５号；同第５，６６１，０１６号；同第５，５４５，８０６号；同第５，８１４，３１８号；同第５，８８５，７９３号；同第５，９１６，７７１号；同第５，９３９，５９８号を参照のこと。これらは、それらの全体が本明細書中に参考として援用される。さらに、Ａｂｇｅｎｉｘ、Ｉｎｃ．（Ｆｒｅｅｍｏｎｔ、Ｃａｌｉｆ．）、Ｇｅｎｐｈａｒｍ（Ｓａｎ Ｊｏｓｅ、Ｃａｌｉｆ．）、およびＭｅｄａｒｅｘ、Ｉｎｃ．（Ｐｒｉｎｃｅｔｏｎ、Ｎ．Ｊ．）のような会社か、上記に記載の技法と類似の技法を用いて選択された抗原に対して惹起されたヒト抗体を提供することに従事し得る。
ヒトＭＡｂもまた、ヒト末梢血白血球、脾細胞または骨髄が移植されたマウスを免疫化することにより作製され得る（例えば、ＸＴＬのＴｒｉｏｍａ技法）。選択されたエピトープを認識する完全なヒト抗体は、「案内された選択（ｇｕｉｄｅｄ ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ）」と称される技法を用いて生成され得る。このアプローチでは、選択された非ヒトモノクローナル抗体、例えば、マウス抗体が、同じエピトープを認識する完全なヒト抗体の選択を案内するために用いられる。（Ｊｅｓｐｅｒら、Ｂｉｏ／ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １２：８９９〜９０３（１９８８））。
さらに、本発明のポリペプチドに対する抗体は、次に、当業者に周知の技法（例えば、Ｇｒｅｅｎｓｐａｎ＆Ｂｏｎａ、ＦＡＳＥＢ Ｊ．７（５）：４３７〜４４４；（１９８９）およびＮｉｓｓｉｏｆｆ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７（８）：２４２９〜２４３８（１９９１））を用いて、本発明のポペプチドを「模倣する」抗イディオタイプ抗体を生成するために利用され得る。例えば、本発明のポリペプチドに結合し、そして本発明のポリペプチドのマルチマー化および／またはリガンドへの結合を競争的に阻害する抗体は、ポリペプチドマルチマー化および／または結合ドメインを「模倣」し、結果として、ポリペプチドおよび／またはリガンドに結合および中和する抗イディオタイプを生成するために用いられ得る。このような中和性抗イディオタイプまたはこのような抗イディオタイプのＦａｂフラグメントは、ポリペプチドリガンドを中和するための治療レジメンで用いられ得る。例えば、このような抗イディオタイプ抗体は、本発明のポリペプチドを結合するため、および／またはそのリガンド／レセプターを結合するために用いられ得、そしてそれによって、その生物学的活性をブロックする。
本発明の抗体は、二重特異性抗体であり得る。二重特異性抗体は、少なくとも２つの異なる抗原に対する結合特異性を有するモノクローナル抗体、好ましくは、ヒト抗体またはヒト化抗体である。本発明では、これら結合特異性の１つは、ＩＬ１３に対して惹起され得、他方は、任意のその他の抗原に対してであり得、そして好ましくは、細胞表面タンパク質、レセプター、レセプターサブユニット、組織特異的抗原、ウイルス由来タンパク質、ウイルスにコードされるエンベロープタンパク質、細菌に由来するタンパク質、または細菌表面タンパク質などである。
二重特異性抗体を作製する方法は周知である。伝統的には、二重特異性抗体の組換え産生は、２つの免疫グロブリン重鎖／軽鎖対の同時発現に基づき、ここで、この２つの重鎖は異なる特異性を有している（ＭｉｌｓｔｅｉｎおよびＣｕｅｌｌｏ、Ｎａｔｕｒｅ、３０５：５３７〜５３９（１９８３））。免疫グロブリン重鎖および軽鎖のランダム組み合わせのために、これらのハイブリドーマ（クアドローマ）は、潜在的に１０の異なる抗体分子の混合物を産生し、そのうちの１つのみが正確な二特異性構造を有する。この正確な分子の精製は、通常、アフィニティークロマトグラフィー工程によって達成される。類似の手順は、１９９３年５月１３日に公開されたＷＯ９３／０８８２９中、およびＴｒａｕｎｅｃｋｅｒら、ＥＭＢＯ Ｊ．、１０：３６５５〜３６５９（１９９１）中に開示されている。
所望の結合特異性を備えた抗体可変ドメインは（抗体−抗原結合部位）、免疫グロブリン定常ドメイン配列に融合され得る。この融合は、少なくともヒンジの部分、ＣＨ２、およびＣＨ３領域を含む、免疫グロブリン重鎖定常ドメインとである。それは、この融合物の少なくとも１つ中に存在する軽鎖結合に必要な部位を含む第１の重鎖定常領域（ＣＨ１）を有し得る。免疫グロブリン重鎖融合物、および所望であれば免疫グロブリン軽鎖をコードするＤＮＡが、別個の発現ベクター中に挿入され、そして適切な宿主生物中に同時形質転換される。二重特異性抗体を生成するさらなる詳細については、例えば、Ｓｕｒｅｓｈら、Ｍｅｔｈ．Ｉｎ Ｅｎｚｙｍ．、１２１：２１０（１９８６）を参照のこと。
異質結合体抗体もまた、本発明によって企図される。異質結合体抗体は、２つの共有結合によって連結された抗体から構成される。このような抗体は、例えば、所望されない細胞に免疫系細胞を標的付けために提案されている（米国特許第４，６７６，９８０号）。これらの抗体は、架橋剤を含む方法のような、合成タンパク質化学における公知の方法を用いてインビトロで調製されることが企図される。例えば、イムノトキシンは、ジスルフィド交換反応を用いて、またはチオエステル結合を形成することにより構築され得る。この目的のために適切な試薬の例としては、イミノチオレートおよびメチル−４−メルカプトブチルイミデート、および例えば米国特許第４，６７６，９８０号中に開示の試薬が挙げられる。
さらに、ＩＬ−１３に対する単一ドメイン抗体を生成し得る。この技術の例は、Ｃａｍｅｌｉｄａｅ重鎖Ｉｇ由来の抗体についてＷＯ９４２５５９１中に記載されており、同様にＵＳ２００３０１３０４９６中では、ファージライブラリーから単一ドメインの完全なヒト抗体の単離が記載されている。
（抗ＩＬ１３抗体の同定）
本発明は、ＩＬ１３の作用を阻害および中和するアンタゴニストモノクローナル抗体を提供する。特に、本発明の抗体は、ＩＬ１３に結合し、そしてＩＬ１３レセプターα鎖−１（ＩＬ１３α１）の活性化を阻害する。本発明の抗体としては、２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３と称される抗体が挙げられ、そして２２８Ｂ／Ｃ−１のヒト化クローンが開示される。本発明としてはまた、これらの抗体の１つと同じエピトープ、例えば、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のエピトープに結合する抗体が挙げられる。
候補抗ＩＬ１３抗体が、酵素結合イムノソルベント検定法（ＥＬＩＳＡ）、ウェスタンイムノブロッティング、またはその他の免疫化学的技法によって試験された。個々の抗体を特徴付けるために実施されるアッセイとしては：（１）ホジキンリンパ腫細胞株ＨＤＬＭ−２およびＬ−１２３６のＩＬ−１３自己分泌増殖の阻害；（２）ＴＨＰ−１細胞におけるＩＬ１３で誘導されるＳＴＡＴ６リン酸化の阻害；および（３）原発性ヒト単球におけるＩＬ１３で誘導されるＣＤ１４発現の抑制；および（４）原発性ヒト単球におけるＩＬ１３で誘導されるＣＤ２３発現の上方制御の阻害が挙げられる。実験の詳細は、実施例中に記載されている。
本発明の抗体としては、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、一価抗体、二重特異性抗体、異種結合体抗体、多特異性抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体またはキメラ抗体、単鎖抗体、単一ドメイン抗体、Ｆａｂフラグメント、Ｆ（ａｂ’）フラグメント、Ｆａｂ発現ライブラリーによって産生されるフラグメント、抗イディオタイプ（抗−Ｉｄ）抗体（例えば、本発明の抗体に対する抗−Ｉｄ抗体を含む）、ならびに上記の任意のエピトープ結合性フラグメントを含む。
用語「抗体」は、本明細書で用いられるとき、免疫グロブリン分子、および免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分、すなわち、抗原を免疫特異的に結合する抗原結合部位を含む分子をいう。本発明の免疫グロブリン分子は、任意のタイプ（例えば、ＩｇＧ、ＩｇＥ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＡおよびＩｇＹ）、クラス（例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１およびＩｇＡ２）または免疫グロブリン分子のサブクラスであり得る。さらに、用語「抗体」（Ａｂ）または「モノクローナル抗体」（ＭＡｂ）は、インタクトな分子、およびタンパク質に特異的に結合し得る（例えば、ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントのような）抗体フラグメントを含むことを意味する。ＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２フラグメントは、インタクトな抗体のＦｃフラグメントを欠き、動物または植物の循環からより迅速にクリアされ、そしてインタクトな抗体に比べより少ない非特異的組織結合を有し得る（Ｗａｈｌら、Ｊ．Ｎｕｃｌ．Ｍｅｄ．２４：３１６〜３２５（１９８３））。
上記抗体は、本発明のヒト抗原結合性抗体フラグメントであり得、このフラグメントとしては、Ｆａｂ、Ｆａｂ’およびＦ（ａｂ’）２、Ｆｄ、単鎖Ｆｖｓ（ｓｃＦｖ）、単鎖抗体、ジスルフィド連結Ｆｖｓ（ｓｄＦｖ）、およびＶＬドメインまたはＶＨドメインのいずれかを含む単一ドメイン抗体が挙げられるが、これらに限定されない。単鎖抗体を含む抗原結合性抗体フラグメントは、単独、または以下の全体または部分と組み合わせて可変領域（単数または複数）を含み得る：ヒンジ領域、ＣＨ１ドメイン、ＣＨ２ドメイン、およびＣＨ３ドメイン。本発明にまた含まれるものは、可変領域（単数または複数）と、ヒンジ領域、ＣＨ１ドメイン、ＣＨ２ドメイン、およびＣＨ３ドメインとの任意の組み合わせを含む抗原結合性フラグメントがある。本発明の抗体は、鳥類および哺乳動物を含む任意の動物起源であり得る。好ましくは、これら抗体は、ヒト、非ヒト霊長類、げっ歯類（例えば、マウスおよびラット）、ロバ、ヒツジ、ウサギ、ヤギ、モルモット、ラクダ、ウマ、またはニワトリ由来である。
本明細書で用いられるとき、「ヒト抗体」は、以下、そして、例えば、Ｋｕｃｈｅｒｌａｐａｔｉらによる米国特許第５，９３９，５９８号に記載されるように、ヒト免疫グロブリンのアミノ酸配列を有する抗体を含み、そして１つ以上のヒト免疫グロブリンについてヒト免疫グロブリンライブラリーから、または動物トランスジェニックから単離され、しかも内因性免疫グロブリンを発現しない抗体を含む。
本発明の抗体は、一特異性、二特異性、三特異性またはより多くの多特異性であり得る。多特異性抗体は、ＩＬ１３の異なるエピトープに対して特異的であり得るか、またはＩＬ１３および異種ポリペプチドまたは固体支持体材料のような異種エピトープの両方に対して特異的であり得る。例えば、ＰＣＴ公開ＷＯ９３／１７７１５；ＷＯ９２／０８８０２；ＷＯ９１／００３６０；ＷＯ９２／０５７９３；Ｔｕｔｔら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４７：６０〜６９（１９９１）；米国特許第４，４７４，８９３号；同第４，７１４，６８１号；同第４，９２５，６４８号；同第５，５７３，９２０号；同第５，６０１，８１９号；Ｋｏｓｔｅｌｎｙら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４８：１５４７〜１５５３（１９９２）を参照のこと。
本発明の抗体は、それらが認識または特異的に結合するＩＬ１３のエピトープ（単数または複数）またはＩＬ１３の部分（単数または複数）に関して記載または特定され得る。エピトープ（単数または複数）またはポリペプチド部分（単数または複数）は、本明細書に記載されるように、例えば、Ｎ末端およびＣ末端位置、連続アミノ酸残基におけるサイズによって特定され得るか、または表および図に列挙される。
本発明の抗体はまた、それらの交差反応性に関して記載または特定され得る。（当該技術分野で公知の方法および本明細書中に記載の方法を用いて算出されるとき）ＩＬ−１３に対して少なくとも９５％、少なくとも９０％、少なくとも８５％、少なくとも８０％、少なくとも７５％、少なくとも７０％、少なくとも６５％、少なくとも６０％、少なくとも５５％、および少なくとも５０％の同一性を有するＩＬ１３を結合する抗体はまた、本発明に含まれる。抗ＩＬ１３抗体もまた、この抗ＩＬ−１３抗体が惹起されている種以外の種からのＩＬ−１３抗体のようなその他のタンパク質に、約１０−７Ｍより少ない、約１０−６Ｍより少ない、または約１０−５Ｍより少ないＫＤで結合し得る。
特定の実施形態では、本発明の抗体は、ヒトＩＬ１３のサルホモログおよびその対応するエピトープと交差反応する。特定の実施形態では、上記に記載の交差反応性は、本明細書に開示される、任意の単一の特異的抗原性または免疫原性ポリペプチド、または特異的抗原性および／または免疫原性ポリペプチドの組み合わせ（単数または複数）に関してである。
本発明にさらに含まれるものとしては、ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件下でＩＬ１３をコードするポリヌクレオチドにハイブリダイズするポリヌクレオチドによってコードされるポリペプチドを結合する抗体が挙げられる。本発明の抗体はまた、本発明のポリペプチドへのそれらの結合親和性に関して記載または特定され得る。好ましい結合親和性は、１０−８〜１０−１５Ｍ、１０−８〜１０−１２Ｍ、１０−８〜１０−１０Ｍ、１０−１０〜１０−１２Ｍの平衡解離定数またはＫＤをともなうものを含む。本発明はまた、競争的結合を決定するために当該技術分野で公知の任意の方法、例えば、本明細書中に記載される免疫アッセイによって決定されるとき、本発明のエピトープへの抗体の結合を競争的に阻害する抗体を提供する。好ましい実施形態では、この抗体は、上記エピトープへの結合を、少なくとも９５％、少なくとも９０％、少なくとも８５％、少なくとも８０％、少なくとも７５％、少なくとも７０％、少なくとも６０％、または少なくとも５０％だけ競争的に阻害する。
（ベクターおよび宿主細胞）
別の局面では、本発明は、本発明の抗体をコードするヌクレオチド配列を含むベクター構築物、およびこのようなベクターを含む宿主細胞を提供する。クローニングおよび形質転換のための標準的な技法が、本発明の抗体を発現する細胞株の調製で用いられ得る。
本発明の抗体をコードするヌクレオチド配列を含む組換え発現ベクターは、周知の技法を用いて調製され得る。これら発現ベクターは、哺乳動物、微生物、ウイルス、または昆虫遺伝子由来のヌクレオチド配列のような適切な転写または翻訳調節ヌクレオチド配列に作動可能に連結されたヌクレオチド配列を含む。制御配列の例は、転写プロモーター、オペレーター、エンハンサー、ｍＲＮＡリボソーム結合部位、および／または転写および翻訳開始および終結を制御するその他の適切な配列を含む。ヌクレオチド配列は、上記調節配列が適切なポリペプチドに対してヌクレオチド配列に機能的に関するとき、「作動可能に連結」されている。従って、プロモーターヌクレオチド配列は、このプロモーターヌクレオチド配列が適切なヌクレオチド配列の転写を制御する場合、例えば、上記抗体重鎖配列に作動可能に連結されている。
さらに、抗体重鎖および／または軽鎖配列と天然には会合していない適切なシグナルペプチドをコードする配列が、発現ベクター中に取り込まれ得る。例えば、シグナルペプチド（分泌リーダー）のためのヌクレオチド配列が、上記抗体がペリプラズム空間または培地中に分泌されるように、このポリペフチド配列にインフレームに融合され得る。意図される宿主細胞中で機能的であるシグナルペプチドは、上記適切な抗体の細胞外分泌を増大させる。このシグナルペプチドは、細胞からの抗体の分泌に際し、のポリペプチドから切断され得る。このような分泌シグナルの例は周知であり、そして、例えば、米国特許第５６９８４３５号、同第５６９８４１７号、および同第６２０４０２３号に記載のものを含む。
本発明において有用な宿主細胞としては、抗体コード配列を含む、組換え細菌ファージＤＮＡ、プラスミドＤＮＡまたはコスミドＤＮＡ発現ベクターで形質転換された細菌（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ）；抗体コード配列を含む組換え酵母発現ベクターで形質転換された酵母（例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ、Ｐｉｃｈｉａ）；抗体コード配列を含む組換えウイルス発現ベクター（例えば、バキュロウイルス）で感染された昆虫細胞系；抗体コード配列を含む組換えウイルス発現ベクター（例えば、カリフラワーモザイクウイルス、ＣａＭＶ；タバコモザイクウイルス、ＴＭＶ）で感染されるかまたは抗体コード配列を含む組換えプラスミド発現ベクター（例えば、Ｔｉプラスミド）で感染された植物細胞系；あるいは哺乳動物細胞のゲノム由来のプロモーター（例えば、メタロチオネインプロモーター）もしくは哺乳動物ウイルスのゲノム由来のプロモーター（例えば、アデノウイルス後期プロモーター；ワクシニアウイルス７．５Ｋプロモーター）を含む組換え発現構築物を宿す哺乳動物細胞系（例えば、ＣＯＳ、ＣＨＯ、ＢＨＫ、２９３、３Ｔ３細胞）が挙げられるが、これらに限定されない。
上記ベクターは、プラスミドベクター、一本鎖もしくは二本鎖ファージベクター、または一本鎖もしくは二本鎖ＲＮＡもしくはＤＮＡウイスルベクターであり得る。このようなベクターは、細胞中にＤＮＡおよびＲＮＡを導入するための周知の技法によりポリヌクレオチドとして細胞中に導入され得る。ファージおよびウイルスベクターの場合には、ベクターはまた、感染および形質導入のための周知の技法によってパッケージ化またはカプセル化ウイルスとして細胞中に導入され得る。ウイルスベクターは、レプリコンコンピテントまたはレプリコン欠損であり得る。後者の場合には、ウイルス増殖は、一般に、相補性宿主細胞中でのみ起こる。細胞フリーの翻訳系がまた採用されて、本発明のＤＮＡ構築物由来のＲＮＡを用いてタンパク質を産生する。このようなベクターとしては、抗体分子の定常領域をコードするヌクレオチド配列が挙げられ得（例えば、ＰＣＴ公開ＷＯ８６／０５８０７；ＰＣＴ公開ＷＯ８９／０１０３６；および米国特許第５，１２２，４６４号を参照のこと）、そして抗体の種々のドメインは、完全な重鎖または軽鎖の発現のために、このようなベクター中にクローン化され得る。
本発明における宿主細胞として有用な原核生物としては、Ｅ．ｃｏｌｉ、およびＢ．ｓｕｂｔｉｌｉｓのようなグラム陰性生物またはグラム陽性生物が挙げられる。原核宿主細胞における使用のための発現ベクターは、一般に、１つ以上の表現型選択マーカー遺伝子を含む。表現型選択マーカー遺伝子は、例えば、抗生物質耐性を与えるかまたは栄養要求性を供給するタンパク質をコードする遺伝子である。原核生物宿主細胞のための有用な発現ベクターの例としては：ｐＫＫ２２３−３（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）、ｐＧＥＭ１（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｂｉｏｔｅｃ、Ｍａｄｉｓｏｎ、Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ．、ＵＳＡ）およびｐＥＴ（Ｎｏｖａｇｅｎ、Ｍａｄｉｓｏｎ、Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ．、ＵＳＡ）およびｐＲＳＥＴ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ、ＵＳＡ）シリーズのベクター（Ｓｔｕｄｉｅｒ、Ｆ．Ｗ．Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１９：３７（１９９１）；Ｓｃｈｏｅｐｆｅｒ、Ｒ．Ｇｅｎｅ １２４：８３（１９９３））のような市販のプラスミド由来のものが挙げられる。組換え原核生物宿主細胞発現ベクターのために一般に用いられるプロモーター配列としては、Ｔ７（Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇら、Ｇｅｎｅ
５６、１２５〜１３５（１９８７））、βラクタマーゼ（ペニシリナーゼ）、ラクトースプロモーター系（Ｃｈａｎｇら、Ｎａｔｕｒｅ ２７５：６１５（１９７８）；およびＧｏｅｄｄｅｌら、Ｎａｔｕｒｅ ２８１：５４４（１９７９）、トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター系（Ｇｏｅｄｄｅｌら、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．８：４０５７（１９８０））、およびｔａｃプロモーター（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９９０、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｒｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．）が挙げられる。
本発明に有用な酵母としては、Ｓａｃｃｈｒｏｍｙｃｅ、Ｐｉｃｈｉａ、ＡｃｔｉｎｏｍｙｃｅｔｅｓおよびＫｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ属由来の酵母が挙げられる。酵母ベクターは、しばしば、２μ酵母プラスミド由来の複製配列起点、自己複製配列（ＡＲＳ）、プロモーター領域、ポリアデニル化のための配列、転写終結のための配列、および選択マーカー遺伝子を含む。酵母ベクターのための適切なプロモーター配列としては、とりわけ、メタロチオネイン、３−ホスホグリセレートキナーゼ（Ｈｉｔｚｅｍａｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５５：２０７３、（１９８０））またはエノラーゼ、グリセルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸脱炭酸酵素、ホスホフルクトキナーゼ、グルコース−６−ホスフェートイソメラーゼ、３−ホスホグリセレートムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオセホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、およびグルコキナーゼのような他の解糖酵素（Ｈｏｌｌａｎｄら、Ｂｉｏｃｈｅｍ．１７：４９００（１９７８））が挙げられる。酵母発現における使用のためのその他の適切なベクターおよびプロモーターは、Ｆｌｅｅｒら、Ｇｅｎｅ、１０７：２８５−１９５（１９９１）にさらに記載されている。酵母および酵母形質転換プロトコールのための他の適切なプロモーターおよびベクターは、当該技術分野で周知である。酵母形質転換プロトコールは周知である。１つのこのようなプロトコールは、Ｈｉｎｎｅｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．、７５：１９２９（１９７８）に記載されている。このＨｉｎｎｅｎのプロトコールは、選択培地中のＴｒｐ＋形質転換体を選択する。
哺乳動物宿主細胞培養系または昆虫細胞培養系もまた、組換え抗体を発現するために採用され得、例えば、異種タンパク質の産生のためのバキュロウイルス系がある。昆虫系では、Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ核多角体病ウイルス（ＡｃＮＰＶ）が、外来遺伝子を発現するためのベクターとして用いられ得る。このウイルスは、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ細胞中で増殖する。抗体コード配列は、このウイルスの非必須領域（例えば、ポリヘドリン遺伝子）中に個々にクローン化され得、そしてＡｃＮＰＶプロモーター（例えば、ポリヘドリンプロモーター）の制御の下に配置される。
本発明の抗体の哺乳動物発現のためにＮＳ０またはチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞が用いられ得る。哺乳動物宿主発現ベクターのための転写および翻訳制御配列は、ウイルスゲノムから切除され得る。一般に用いられるプロモーター配列およびエンハンサー配列は、ポリオーマウイルス、アデノウイルス２、サルウイルス４０（ＳＶ４０）、およびヒトサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）由来である。ＳＶ４０ウイルスゲノム由来のＤＮＡ配列は、哺乳動物細胞中の構造遺伝子配列の発現のための他の遺伝的要素を提供するために用いられ得、例えば、ＳＶ４０複製起点、初期および後期プロモーター、エンハンサー、スプライス、およびポリアデニル化部位がある。ウイルス初期プロモーターおよび後期プロモーターが特に有用である。なぜなら、両者は、ウイルスの複製起点もまた含み得るフラグメントとしてウイルスゲノムから容易に得られ得るからである。哺乳動物宿主細胞における使用のための例示の発現ベクターは、市販されている。
（抗体をコードするポリヌクレオチド）
本発明は、本発明の抗体およびそのフラグメントをコードするヌクレオチド配列を含む、ポリヌクレオチドまたは核酸（例えば、ＤＮＡ）をさらに提供する。例示のポリヌクレオチドは、本明細書に記載のアミノ酸配列の１つ以上を含む抗体鎖をコードするポリヌクレオチドを含む。本発明はまた、本発明の抗体をコードするポリヌクレオチドに、ストリンジェントまたはより低いストリンジェンシーハイブリダイゼーション条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドを包含する。
上記ポリヌクレオチドが得られ得、そしてポリヌクレオチドのヌクレオチド配列が、当該技術分野で公知の任意の方法によって決定される。例えば、抗体のヌクレオチドが既知である場合は、この抗体をコードするポリヌクレオチドは、（例えば、Ｋｕｔｍｅｉｅｒら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １７：２４２（１９９４）に記載のように）化学合成されたオリゴヌクレオチドからアセンブルされ得る。これは、要約すれば、この抗体をコードする配列の部分を含む重複するオリゴヌクレオチドの合成、これらのオリゴヌクレオチドのアニーリングおよび連結、そして次に連結されたオリゴヌクレオチドのＰＣＲによる増幅を包含する。
あるいは、抗体をコードするポリヌクレオチドは、適切な供給源からの核酸から生成され得る。特定の抗体をコードする核酸を含むクローンが利用可能ではないが、抗体分子の配列が既知の場合、この配列の３’末端および５’末端にハイブリダイズする合成プライマーを用いるＰＣＲ増幅によるか、または、例えば、上記抗体をコードするｃＤＮＡライブラリーからのｃＤＮＡクローンを同定するための特定の遺伝子配列に特異的なオリゴヌクレオチドプローブを用いるクローニングにより、免疫グロブリンをコードする核酸が化学的に合成され得るか、または適切な供給源から得られ得る（例えば、本発明の抗体を発現するように選択されたハイブリドーマ細胞のような、この抗体を発現する任意の組織または細胞から単離された、抗体ｃＤＮＡライブラリー、または生成されたｃＤＮＡライブラリー、または核酸、好ましくはポリＡ＋ＲＮＡ）。ＰＣＲにより生成された増幅核酸は、次いで、当該分野で周知の任意の方法を用いて複製可能なクローニングベクター中にクローン化され得る。
一旦、抗体のヌクレオチド配列および対応するアミノ酸配列が決定されると、この抗体のヌクレオチド配列は、当該技術分野で周知の操作方法、例えば、組換えＤＮＡ技法、部位特異的変異誘発、ＰＣＲなど（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９９０、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．およびＡｕｓｕｂｅｌら編、１９９８、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ、ＮＹに記載される技法を参照のこと。これらは、両者ともそれらの全体が本明細書中に参考として援用される）を用いて操作され得、異なるアミノ酸配列を有する抗体を生成し、例えば、アミノ酸置換、欠失、および／または挿入を生成する。
特定の実施形態では、重鎖可変ドメインおよび／または軽鎖可変ドメインのアミノ酸配列は、周知の方法（例えば、配列超可変性の領域を決定するための、他の重鎖可変領域および軽鎖可変領域の既知のアミノ酸配列に対する比較）によってＣＤＲの配列を同定するために検査され得る。慣用の組換えＤＮＡ技法を用いて、上述に記載のような非ヒト交代をヒト化するために、１つ以上のＣＤＲがフレームワーク領域内（例えば、ヒトフレームワーク領域中）に挿入され得る。これらフレームワーク領域は、天然に存在するか、またはコンセンサスフレームワーク領域であり得、そして好ましくはヒトフレームワーク領域である（例えば、ヒトフレームワーク領域の列挙については、Ｃｈｏｔｈｉａら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２７８：４５７〜４７９（１９８８）を参照のこと）。好ましくは、フレームワーク領域およびＣＤＲの組み合わせにより生成されるポリヌクレオチドは、本発明のポリペプチドを特異的に結合する抗体をコードする。好ましくは、上述で論議されたように、１つ以上のアミノ酸置換が、このフレームワーク領域内に作製され得、そして、好ましくは、そのアミノ酸置換は、抗体のその抗原への結合を改善する。さらに、このような方法は、１つ以上の鎖内ジスルフィド結合を欠く抗体分子を生成するために、鎖内ジスルフィド結合に参加する１つ以上の可変領域システイン残基のアミノ酸置換または欠失を作製するために用いられ得る。上記ポリヌクレオチドへの他の改変が、本発明によって包含され、そして当該技術分野の技術である。
さらに、適切な生物学的活性のヒト抗体分子由来の遺伝子ともに、適切な抗原特異性のマウス抗体分子由来の遺伝子をスプライスすることによる「キメラ抗体」産生のために開発された技法（Ｍｏｒｒｉｓｏｎｏら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８１：８５１〜８５５（１９８４）；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ ３１２：６０４〜６０８（１９８４）；Ｔａｋｅｄａら、Ｎａｔｕｒｅ ３１４：４５２〜４５４（１９８５））が用いられ得る。上述に記載のように、キメラ抗体は、マウスＭＡｂ由来の可変領域およびヒト免疫グロブリン定常領域を有する抗体（例えば、ヒト化抗体）のような、異なる部分が異なる動物種由来である分子である。
あるいは、単鎖抗体の産生のために記載された技法（米国特許第４，９４６，７７８号；Ｂｉｒｄ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：４２３〜４２（１９８８）；Ｈｕｓｔｏｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：５８７９〜５８８３（１９８８）；およびＷａｒｄら、Ｎａｔｕｒｅ ３３４：５４４〜５４）が、単鎖抗体を産生するために適合され得る。単鎖抗体は、アミノ酸架橋によりＦｖ領域の重鎖フラグメントと軽鎖フラグメントとを連結することにより形成され、単鎖ポリペプチドを生じる。Ｅ．ｃｏｌｉ中の機能的Ｆｖフラグメントのアセンブリのための技法もまた用いられ得る（Ｓｋｅｒｒａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：１０３８〜１０４１（１９８８））。
（抗ＩＬ１３抗体を産生する方法）
本発明の抗体は、抗体の合成のための当該技術分野で公知の任意の方法、特に化学的合成または好ましくは、組換え発現技法により産生され得る。
本発明の抗体、またはそのフラグメント、誘導体もしくはアナログ（例えば、本発明の抗体の重鎖もしくは軽鎖または本発明の単鎖抗体）の組換え発現は、この抗体またはこの抗体のフラグメントをコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターの構築を必要とする。一旦、抗体分子をコードするポリヌクレオチドが得られると、この抗体の産生のためのベクターは、組換えＤＮＡ技法によって産生され得る。発現ベクターは、抗体コード配列および適切な転写制御信号および翻訳制御信号を含んで構築される。これらの方法としては、例えば、インビトロ組換えＤＮＡ技法、合成技法、およびインビボ遺伝子組換えが挙げられる。
この発現ベクターは、従来技法によって宿主細胞に移入され、そしてトランスフェクトされた細胞は、次いで、従来技法によって培養され、本発明の抗体を産生する。本発明の１つの局面では、重鎖および軽鎖の両方をコードするベクターは、以下に詳細に記載されるように、完全な免疫グロブリン分子の発現のために宿主細胞中で同時発現され得る。
種々の宿主−発現ベクター系が、上記に記載のような本発明の抗体分子を発現するために利用され得る。このような宿主−発現系は、ビヒクル（それによって目的のコード配列が産生され得、そして次に精製される）を提示するが、適切なヌクレオチドコード配列で形質転換またはトランスフェクトされるとき、本発明の抗体分子をインサイチュで発現し得る細胞をまた提示する。Ｅ．ｃｏｌｉのような細菌細胞および真核生物細胞が、組換え抗体分子の発現、特に完全な組換え抗体分子の発現のために一般に用いられる。例えば、ヒトサイトメガロウイルスからの主要中間初期遺伝子プロモーター要素のようなベクターと組み合わせたチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）のような哺乳動物細胞は、抗体のための有効な発現系である（Ｆｏｅｃｋｉｎｇら、Ｇｅｎｅ ４５：１０１（１９８６）；Ｃｏｃｋｅｔｔら、Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８：２（１９９０））。
さらに、挿入された配列の発現を調節するか、または所望の特定の様式で遺伝子産物を改変および操作する宿主細胞株が選択され得る。タンパク質産物のこのような改変（例えば、グリコシル化）および操作（例えば、切断）は、タンパク質の機能のために重要であり得る。異なる宿主細胞が、タンパク質および遺伝子産物の翻訳後プロセシングおよび改変のための特徴および特定の機構を有している。適切な細胞株または宿主系が、発現される外来タンパク質の正確な改変およびプロセシングを確実にするために選択され得る。この目的のために、一次転写物の適正なプロセシング、グリコシル化、および遺伝子産物のリン酸化の適正なプロセシングのための細胞装置を所有する真核生物宿主細胞が用いられ得る。このような真核生物細胞としては、ＣＨＯ、ＣＯＳ、２９３、３Ｔ３、または骨髄腫細胞が挙げられるが、それらに限定されない。
組換えタンパク質の長期間、高収率産生には、安定発現が好ましい。例えば、抗体分子を安定に発現する細胞株が操作され得る。ウイルスの複製起点を含む発現ベクターを用いるよりむしろ、宿主細胞は、適切な発現制御要素（例えば、プロモーター、エンハンサー、配列、転写ターミネーター、ポリアデニル化部位など）によって制御されるＤＮＡ、および選択マーカーで形質転換され得る。外来ＤＮＡの導入後、操作された細胞は、栄養培地中で１〜２日間増殖させられ得、そして次に選択培地にスイッチされる。組換えプラスミド中の選択マーカーは、選択への耐性を与え、そして細胞が、それらの染色体中にプラスミドを安定に組み込ませ、そして成長して増殖巣を形成することを可能にし、これが次にクローン化され、そして細胞株に増殖し得る。この方法は、抗体分子を発現する細胞株を操作するために有利に用いられ得る。このような操作された細胞株は、抗体分子と直接的または間接的に相互作用する化合物のスクリーニングおよび評価で特に有用であり得る。
多くの選択系が用いられ得、その選択系としては、単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ（Ｗｉｇｌｅｒら、Ｃｅｌｌ １１：２２３（１９７７））、ヒポキサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｓｚｙｂａｌｓｋａ ＆ Ｓｚｙｂａｌｓｋｉ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ４８：２０２（１９９２））、およびアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｌｏｗｙら、Ｃｅｌｌ ２２：８１７（１９８０））遺伝子（それぞれ、ｔｋ、ｈｇｐｒｔまたはａｐｒｔ−細胞で採用され得る）が挙げられるが、これらに限定されない。また、抗代謝産物耐性が、以下の遺伝子について選択の基礎として用いられ得る：メトトレキセートに対する耐性を与えるｄｈｆｒ（Ｗｉｇｌｅｒら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７７：３５７（１９８０）；Ｏ’Ｈａｒｅら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７８：１５２７（１９８１））；ミコフェノール酸に対する耐性を与えるｇｐｔ（Ｍｕｌｌｉｇａｎ＆Ｂｅｒｇ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７８：２０７２（１９８１））；アミノグリコシドＧ−４１８に対する耐性を与えるｎｅｏ（ＷｕおよびＷｕ、Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｙ ３：８７〜９５（１９９１））；およびヒグロマイシンに対する耐性を与えるｈｙｇｒｏ（Ｓａｎｔｅｒｒｅら、Ｇｅｎｅ ３０：１４７（１９８４））。組換えＤＮＡ技法の技術分野で一般に公知の方法が、所望の組換えクローンを選択するために慣用的に適用され得、そしてこのような方法は、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌら（編）、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ、ＮＹ（１９９３）；Ｋｒｉｅｇｌｅｒ、Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ ａｎｄ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ、Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｎｕａｌ、Ｓｔｏｃｋｔｏｎ Ｐｒｅｓｓ、ＮＹ（１９９０）；およびＤｒａｃｏｐｏｌｉら（編）、Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ、ＮＹ（１９９４）、第１２および１３章；Ｃｏｌｂｅｒｒｅ−Ｇａｒａｐｉｎら、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１５０：１（１９８１）に記載されており、これらは、それらの全体が本明細書中に参考として援用される。
抗体分子の発現レベルは、ベクター増幅によって増加され得（総説としては、ＢｅｂｂｉｎｇｔｏｎおよびＨｅｎｔｓｃｈｅｌ、「哺乳動物細胞におけるクローン化遺伝子の発現のための遺伝子増幅を基にしたベクターの使用」（ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ、第３巻、Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、１９８７）を参照のこと）。抗体を発現するベクター系中のマーカーが増幅可能であるとき、宿主細胞の培養物中に存在するインヒビターのレベルの増加は、マーカー遺伝子のコピー数を増加する。増幅された領域は抗体遺伝子と関連するので、抗体の産生もまた増加する（Ｃｒｏｕｓｅら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．３：２５７（１９８３））。
宿主細胞は、本発明の２つの発現ベクター（重鎖由来のポリペプチドをコードする第１のベクター、および軽鎖由来のポリペプチドをコードする第２のベクター）で同時トランスフェクトされ得る。これら２つのベクターは、同一の選択マーカーを含み得、これは、重鎖および軽鎖ポリペプチドの等しい発現を可能にする。あるいは、重鎖ポリペプチドおよび軽鎖ポリペプチドの両方をコードし、そして発現し得る単一のベクターが用いられ得る。このような状況では、軽鎖は、重鎖の前に配置されるべきであり、過剰の毒性遊離重鎖を避ける（Ｐｒｏｕｄｆｏｏｔ、Ｎａｔｕｒｅ ３２２：５２（１９８６）；Ｋｏｈｌｅｒ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７７：２１９７（１９８０））。重鎖および軽鎖のためのコード配列は、ｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡを含み得る。
一旦、本発明の抗体分子が動物により産生、化学的に合成、または組換えにより発現されると、それは、免疫グロブリン分子の精製のために当該分野で公知の任意の方法（例えば、クロマトグラフィー（例えば、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、特にプロテインＡ後の特異的抗原に対するアフィニティークロマトグラフィー、およびサイズ排除クロマトグラフィー）、遠心分離、差示的溶解度、またはタンパク質の精製のための任意のその他の標準的な技法）により精製され得る。さらに、本発明の抗体またはそのフラグメントは、本明細書中に記載の、またはそうでなければ当該技術分野で公知の異種ポリペプチド配列に融合され得、精製を容易にする。
本発明は、ポリペプチドに、組換えにより融合されるかまたは化学的に結合体化された（共有結合、および非共有結合の両方による結合体を含む）抗体を包含する。本発明の融合または複合体化された抗体は、精製における容易さのために用いられ得る（例えば、Ｈａｒｂｏｒら、前述、およびＰＣＴ公開ＷＯ９３／２１２３２；ＥＰ ４３９，０９５；Ｎａｒａｍｕｒａら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｌｅｔｔ．３９：９１〜９９（１９９４）；米国特許第５，４７４，９８１号；Ｇｉｌｌｉｅｓら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８９：１４２８〜１４３２（１９９２）；Ｆｅｌｌら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１４６：２４４６〜２４５２（１９９１）を参照のこと。これらは、それらの全体が参考として援用される。）。
さらに、本発明の抗体またはそのフラグメントは、ペプチドのようなマーカー配列に融合され得、精製を容易にする。好ましい実施形態では、マーカーアミノ酸配列は、ｐＱＥベクター（ＱＩＡＧＥＮ，Ｉｎｃ．、９２５９ Ｅｔｏｎ Ａｖｅｎｕｅ、Ｃｈａｔｓｗｏｒｔｈ、Ｃａｌｉｆ．、９１３１１）中に提供されるタグのような、６−ヒスチジンペプチドであり、とりわけ、その多くは市販されている。Ｇｅｎｔｚら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：８２１〜８２４（１９８９）に記載れさるように、例えば、６−ヒスチジンは、融合タンパク質の簡便な精製を提供する。精製のために有用な他のペプチドタグとしは、インフルエンザ血球凝集素タンパク質由来のエピトープに対応する「ＨＡ」タグ（Ｗｉｌｓｏｎら、Ｃｅｌｌ ３７：７６７（１９８４））、および「ｆｌａｇ」タグが挙げられるが、これらに限定されない。
（抗ＩＬ１３抗体のための診断使用）
本発明の抗体は、改変されている、すなわち、抗体への任意のタイプの分子の共有結合による誘導体を含み、この共有結合は、ＩＬ１３への結合を妨害しない。例えば、制限するのではなく、この抗体誘導体としては、例えば、ビオチン化、ＨＲＰ、または任意のその他の検出可能成分によって改変された抗体が挙げられる。
本発明の抗体は、例えば、制限されずに、ＩＬ１３を精製または検出するために用いられ得、インビトロおよびインビボ両方の診断方法を含む。例えば、これら抗体は、生物学的サンプル中のＩＬ１３のレベルを定性的および定量的に測定するための免疫アッセイにおける用途を有する。例えば、Ｈａｒｌｏｗら、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ、（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、第２版、１９８８）（その全体は本明細書中に参考として援用される）を参照のこと。
以下により詳細に論議されるように、本発明の抗体は、単独か、またはその他の組成物と組み合わせてのいずれかで用いられ得る。これら抗体は、さらに、Ｎ末端またはＣ末端で異種ポリペプチドに組換えにより融合され得るか、またはポリペフチドまたはその他の組成物に化学的に結合体化され得る（共有結合体および非共有結合体を含む）。例えば、本発明の抗体は、検出アッセイにおける標識として有用な分子に組換えにより融合されるかまたは結合体化され得る。
本発明は、診断試薬に結合体化された抗体またはそのフラグメントをさらに包含する。これら抗体は、診断的に、例えば、所定の処置レジメンの効果を測定するために、臨床試験手順の一部としてアレルギー応答の発症または進行をモニターするために用いられ得る。検出は、この抗体を検出可能な物質に連結することにより容易にされ得る。検出可能な物質の例としては、種々の酵素、補欠分子族、蛍光物質、発光物質、生物発光物質、放射活性物質、種々のポジトロン放射断層撮影を用いるポジトロン放射金属、および非放射活性常磁性金属イオンが挙げられる。この検出可能な物質は、抗体（またはそのフラグメント）に直接的に、または当該技術分野で公知の技法を用いて、（例えば、当該技術分野で公知のリンカーのような）中間体を通じて間接的に、いずれかで連結または結合体化され得る。例えば、本発明による診断薬としての使用のための抗体に結合体化され得る金属イオンについては、米国特許第４，７４１，９００号を参照のこと。適切な酵素の例としては、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、またはアセチルコリンエステラーゼが挙げられ；適切な補欠分子族複合体の例としては、ストレプトアビジン／ビオチンおよびアビジン／ビオチンが挙げられ；適切な蛍光物質の例としては、ウムベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアナート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロライドまたはフィコエリトリンが挙げられ；発光物質の例としてはルミノールが挙げられ；生体発光物質の例としては、ルシフェラーゼ、ルシフェリン、およびエクオリンが挙げられ；そして適切な放射活性物質の例としては、１２５Ｉ、１３１Ｉ、１１１Ｉｎまたは９９Ｔｃが挙げられる。
抗体はまた、固体支持体に結合され得、これらは、標的抗原の免疫アッセイまたは精製のために特に有用である。このような固体支持体としては、ガラス、セルロース、ポリアクリルアミド、ナイロン、ポリスチレン、ポリビニルクロライドまたはポリプロピレンが挙げられるが、これらに限定されない。
ＩＬ１３に特異的に結合する標識された抗体、ならびにその誘導体およびアナログは、ＩＬ１３の異常発現および／または活性に関連する疾患、障害、および／または状態を検出、診断またはモニターする目的のために用いられ得る。本発明は、ＩＬ１３の異常発現の検出を提供し、（ａ）ＩＬ１３に特異的な本発明の１つ以上の抗体を用いて、細胞または個体の体液中のＩＬ１３の発現をアッセイする工程、および（ｂ）標準的な遺伝子発現と、その遺伝子発現のレベルを比較するし、それによって、標準的な発現レベルと比較されたＩＬ１３発現のレベルにおける増加または減少を異常発現の指標とする工程を包含する。
抗体は、サンプル（例えば、体液または組織サンプル）中のＩＬ１３の存在および／またはレベルを検出するために用いられ得る。この検出法は、上記サンプルをＩＬ１３抗体と接触させる工程、およびこのサンプルに結合される抗体の量を測定する工程を包含する。
本発明は、障害を診断するための診断アッセイを提供し、（ａ）本発明の１つ以上の抗体を用いて細胞または個体の体液中のＩＬ１３の発現をアッセイする工程、および（ｂ）標準の遺伝子発現と遺伝子発現のレベルを比較し、それによって、この標準的な発現レベルと比較されたアッセイされた遺伝子発現のレベルにおける増加または減少を、特定の障害の指標とする工程を包含する。
本発明の抗体は、当業者に公知の古典的な免疫組織学的方法を用いて生物学的サンプル中のタンパク質レベルをアッセイするために用いられ得る（例えば、Ｊａｌｋａｎｅｎら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１０１：９７６〜９８５（１９８５）；Ｊａｌｋａｎｅｎら、Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１０５：３０８７〜３０９６（１９８７）を参照のこと）。タンパク質遺伝子発現を検出するために有用な他の抗体を基礎にした方法としては、酵素結合免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）およびラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）のような免疫アッセイを含む。適切な抗体アッセイ標識は当該技術分野で公知であり、そしてグルコースオキシダーゼのような酵素標識；ヨウ素（１２５Ｉ、１２１Ｉ）、炭素（１４Ｃ）、イオウ（３５Ｓ）、トリチウム（３Ｈ）、インジウム（１１２Ｉｎ）、およびテクネチウム（９９Ｔｃ）のような放射性同位元素；ルミノールのような発光標識；およびフルオレセインおよびローダミンのような蛍光標識、ならびにビオチンが挙げられる。
本発明の１つの局面は、動物（好ましくは哺乳動物、そして最も好ましくはヒト）におけるＩＬ１３の異常発現と関連する疾患または障害の検出および診断である。１つの実施形態では、診断は：ａ）被験体に、ＩＬ１３に特異的に結合する標識された分子の有効量を投与（例えば、非経口、皮下または腹腔内）する工程；ｂ）投与後にある時間間隔待ち、この標識された分子を、このポリペプチドが発現される被験体中の部位に優先的に濃縮させる（そして非結合標識分子がバックグラウンドレベルまで除去される）工程；ｃ）バックグラウンドレベルを測定する工程；およびｄ）このバックグラウンドレベルの上の標識分子の検出が、被験体がＩＬ１３の異常発現に関連する特定の疾患または障害を有することを示すように、被験体中の標識分子を検出する工程を包含する。バックグラウンドレベルは、種々の方法によって決定され得、この方法は、特定の系について先に決定された標準値に、検出された標識分子の量を比較する工程を包含する。
被験体のサイズおよび用いられる造影システムが診断イメージを生成するために必要な造影成分の量を決定することが、当該技術分野で理解される。放射性同位元素成分の場合には、ヒト被験体について、注入される放射活性の量は、通常、約５〜２０ミリキューリーの９９Ｔｃの範囲である。標識された抗体または抗体フラグメントは、次いで、特異的タンパク質を含む細胞の位置で優先的に蓄積する。インビボ造影は、Ｓ．Ｗ．Ｂｕｒｃｈｉｅｌら、「放射標識された抗体およびそれらのフラグメントの免疫薬物同動態学」（Ｔｕｍｏｒ Ｉｍａｇｉｎｇ中の第１３章：Ｔｈｅ Ｒａｄｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｃａｎｃｅｒ、Ｓ．Ｗ．ＢｕｒｃｈｉｅｌおよびＢ．Ａ．Ｒｈｏｄｅｓ編、Ｍａｓｓｏｎ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｉｎｃ．（１９８２））に記載されている。
用いられる標識のタイプおよび投与の様式を含むいくつかの変数に依存して、標識された分子が被験体中の部位に優先的に濃縮すること、および非結合標識分子がバックグラウンドレベルまで除去されることを許容するための投与後の時間間隔は、６〜４８時間または６〜２４時間または６〜１２時間である。別の実施形態では、投与後の時間間隔は、５〜２０日または５〜１０日である。
ある実施形態では、疾患または障害のモニタリングは、上記疾患または障害を診断する方法を、例えば、初期診断の１ヶ月後、初期診断の６ヶ月後、初期診断の１年後などに繰り返すことによって実施される。
標識分子の存在は、インビボ走査のための当該分野で公知の方法を用いて患者中で検出され得る。これらの方法は、用いられる標識のタイプに依存する。当業者は、特定の標識を検出するための適切な方法を決定し得る。本発明の診断方法で用いられ得る方法およびデバイスとしては、コンピューター断層撮影（ＣＴ）、ポジトロン放射断層撮影（ＰＥＴ）のような全身走査、磁気共鳴造影（ＭＲＩ）、および超音波検査が挙げられるが、これらに限定されない。
特定の実施形態では、上記分子は、放射性同位元素で標識され、そして放射応答性外科用器具を用いて患者中で検出される（Ｔｈｕｓｔｏｎら、米国特許第５，４４１，０５０号）。別の実施形態では、上記分子は、蛍光化合物で標識され、そして蛍光応答性走査器具を用いて患者中で検出される。別の実施形態では、上記分子は、ポジトロン放射金属で標識され、そしてポジトロン放射断層撮影を用いて患者中で検出される。なお別の実施形態では、上記分子は、常時性標識で標識され、そして磁気共鳴造影（ＭＲＩ）を用いて患者中で検出される。
別の局面では、本発明は、サイトカインの非調節発現によって引き起こされる疾患を発症する患者の傾向を診断する方法を提供する。特定の患者細胞、組織または体液中の増加量のＩＬ１３は、この患者が特定の免疫疾患に対しかかりやすいことを示し得る。１つの実施形態では、この方法は、ＩＬ１３の低レベルまたは通常レベルを有することが知られる被験体の細胞、組織または体液サンプルを収集する工程、この組織中のＩＬ１３の存在について上記組織または体液を分析する工程、および上記組織または体液中のＩＬ１３の発現のレベルを基に、特定の免疫疾患に対するこの患者の傾向を予測する工程を包含する。別の実施形態では、この方法は、患者からの規定されたレベルのＩＬ１３を含むことが知られる細胞、組織、または体液サンプルを収集する工程、ＩＬ１３の量について組織または体液を分析する工程、および通常細胞、組織または体液について確立された規定または試験されたレベルに比較されたＩＬ１３の量における変化を基に、特定の免疫疾患に対する患者の傾向を予測する工程を包含する。ＩＬ１３のこの規定されたレベルは、文献値に基づく既知量であり得るか、または通常細胞、組織、または体液中の量を測定することによって前もって決定され得る。詳細には、特定組織または体液中のＩＬ１３の測定は、特異的でかつ早期の（好ましくは、疾患が発症する前に）患者における免疫疾患の検出を許容する。本発明の方法を用いて診断され得る免疫疾患としては、本明細書中に記載される免疫疾患が挙げられるが、これに限定されない。好ましい実施形態では、上記組織または体液は、末梢血、末梢血白血球、肺または皮膚生検のような生検、および組織を含む。
（抗ＩＬ１３抗体の治療使用）
抗体に結合体化された治療成分と一緒にまたはなしで、抗体は、単独でまたは細胞傷害性因子（単数または複数）と組み合わせて、治療薬として用いられ得る。本発明は、抗体を基礎にした治療に関し、これは、本発明の抗体を、ＩＬ１３が媒介する疾患、傷害、または状態を、動物、哺乳動物、またはヒトに投与する工程を含む。この動物または被験体は、特定の障害（例えば、ＩＬ１３に関係する障害）をもつと診断された動物のような、特定の処置が必要な動物であり得る。ＩＬ１３に対して惹起された抗体は、動物においてアレルギー反応を阻害するために有用であり、この動物としては、ウシ、ブタ、ウマ、ニワトリ、ネコ、イヌ、非ヒト霊長類など、およびヒトが挙げられるが、これらに限定されない。例えば、治療的に受容可能な用量の本発明の抗体（もしくは複数の抗体）または本発明の抗体のカクテル、または種々の供給源のその他の抗体との組み合わせを投与することにより、抗原に対するアレルギー応答が、処置された哺乳動物において減少またはなくされ得る。
本発明の治療化合物としては、本発明の抗体（本明細書中に記載されるような、そのフラグメント、アナログおよび誘導体を含む）、ならびに以下に記載のような本発明の抗体（本明細書中に記載のような、そのフラグメント、アナログおよび誘導体および抗イディオタイプ抗体を含む）をコードする核酸が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の抗体は、ＩＬ１３の異常発現および／または活性にともなう疾患、傷害または症状（本明細書中に記載される任意の１種以上の疾患、障害、または状態を含む）を処置、阻害または予防するために用いられ得る。ＩＬ１３の異常発現および／または活性にともなう疾患、障害、または状態の処置および／または予防としては、これらの疾患、障害、または状態にともなう少なくとも１つの症状を軽減することが挙げれれるが、こらに限定されない。本発明の抗体は、当該分野で公知のような、または本明細書中に記載のような薬学的に受容可能な組成物で提供され得る。
本発明の抗ＩＬ１３抗体は、種々の疾患で治療的に用いられ得る。本発明は、哺乳動物においてＩＬ１３が媒介する疾患を予防または処置する方法を提供する。この方法は、哺乳動物に、疾患を予防する量または処置する量の抗ＩＬ１３抗体を投与する工程を包含する。この抗ＩＬ１３抗体は、ＩＬ１３へ結合し、そしてサイトカインおよび細胞レセプター発現を調節し、非疾患状態に特徴的なサイトカインレベルを生じる。従って、処置に対する疾患としては、アレルギー、喘息、自己免疫疾患、またはその他の炎症性疾患が挙げられる。その他のアレルギー疾患としては、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎、食物過敏症および蕁麻疹が挙げられる；免疫媒介皮膚疾患としては、水疱性皮膚疾患、多形性紅斑および接触皮膚炎が挙げられる；自己免疫疾患としては、乾癬、慢性関節リウマチ、若年性慢性関節炎；炎症性大腸疾患（すなわち、潰瘍性大腸炎、クローン病）が挙げられる；その他のＩＬ１３にともなう疾患としては、特発性間質性肺炎、杯細胞化生、嚢胞性線維症のような炎症性肺疾患および線維性肺疾患、グルテン感受性腸炎、およびホウィップル病；好酸球性肺炎、特発性肺線維症および過敏性肺臓炎のような肺の炎症性疾患；慢性閉塞性肺疾患、ＲＳＶ感染、子宮炎、強皮症、骨粗しょう症、およびホジキンリンパ腫が挙げられる。
ＩＬ１３の異常発現および／または活性にともなう処置、阻害および予防に有効である量は、標準的な臨床技法によって決定され得る。上記抗体は、疾患に合致する処置レジメン、例えば、疾患状態を改善するための１〜数日に亘る単回または２〜３用量、またはアレルギーまたは喘息を防ぐための長期間に亘る周期的用量で投与され得る。さらに、インビトロアッセイが、最適用量範囲の同定を支援するために、必要に応じて採用される。この処方において採用されるべき正確な用量はまた、投与の経路、および疾患または障害の重篤度に依存し、そして実施医の判断および各患者の状況に従って決定されるべきである。有効な用量は、インビトロまたは動物モデル試験系からの用量応答曲線から外挿され得る。
抗体について、患者に投与される用量は、代表的には、患者体重の０．１ｍｇ／ｋｇ〜１００ｍｇ／ｋｇである。好ましくは、患者に投与される用量は、患者体重の０．１ｍｇ／ｋｇ〜２０ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは、患者体重の１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇである。一般に、ヒト抗体は、外来のポリペプチドに対する免疫応答に起因して、他の種からの抗体よりヒト身体内でより長い半減期を有する。従って、ヒト抗体のより低い用量およびより少ない頻度の投与がしばしば可能である。さらに、本発明の抗体の用量および投与の頻度は、例えば、脂質化のような改変によって、抗体の取り込みおよび組織貫通（例えば、脳中に）を増加することにより、減少され得る。
本発明の抗体は、その他のモノクローナル抗体もしくはキメラ抗体、またはリンホカインもしくは造血性成長因子（例えば、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−７、ＩＦＮ）と組み合わせて有利に利用され得、例えば、上記抗体と相互作用するエフェクター細胞の数または活性を増加するために供される。
本発明の抗体は、単独でかまたは他のタイプの処置（例えば、免疫療法、気管支拡張薬、抗ＩｇＥ分子、抗ヒスタミン剤、または抗ロイコトリエン剤）と組み合わせて投与され得る。
好ましい局面では、上記抗体は、実質的に精製されている（例えば、その影響を制限する物質または所望されない副作用を生成する物質が実質的にない）。
種々の送達系が公知であり、そして本発明の抗体を投与するために用いられ得、注入、例えば、リポソーム中のカプセル化、微粒子、マイクロカプセル、上記化合物を発現し得る組換え細胞、複合レセプター媒介エンドサイトーシス（例えば、Ｗｕら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６２：４４２９〜４４３２（１９８７）を参照のこと）、レトロウイルスまたは他のベクターの一部としての核酸の構築などが挙げられる。
上記抗ＩＬ１３抗体は、任意の受容可能な様式で哺乳動物に投与され得る。導入の方法としては、皮内経路、筋肉内経路、腹腔内経路、静脈内経路、皮下経路、鼻腔内経路、硬膜外経路、吸入経路および経口経路が挙げられるが、これらに限定されない。上記抗体または組成物は、任意の従来経路によって（例えば、輸液またはボーラス注射により、上皮または皮膚および粘膜の裏打ち（例えば、口粘膜、直腸および腸管粘膜など）を通じる吸収により）投与され得、そして他の生物学的に活性な試薬とともに投与され得る。投与は、全身的または局所的であり得る。さらに、本発明の治療的抗体または組成物を、任意の適した経路（脳室内およびくも膜下内腔内注射を含む）によって中枢神経系中に導入することが所望され得；脳室内注射は、例えば、オマヤレザバー（Ｏｍｍａｙａ ｒｅｓｅｒｖｏｉｒ）のようなリザバーに取り付けられた、脳室内カテーテルによって促進され得る。
肺投与もまた採用され得、例えば、吸入器または噴霧器の使用、およびエアロゾル化試薬との処方による。上記抗体はまた、乾燥粉末組成物（例えば、米国特許第６，５１４，４９６号を参照のこと）の形態で、患者の肺中に投与され得る。
特定の実施形態では、本発明の治療的抗体または組成物を、処置の必要な領域に局所的に投与することが所望され得；これは、例えば、局所注入、局所塗布により、注射により、カテーテルにより、座薬により、またはインプラントにより達成され得るが、これらに限定されない。このインプラントは多孔性、非多孔性、またはゼラチン状材料であり、シアル酸（ｓｉａｌａｓｔｉｃ）膜のような膜、または繊維を含む。好ましくは、本発明の抗体を投与する場合、タンパク質が吸着されない材料を用いることに注意しなければならない。
別の実施形態では、上記抗体は、小胞、特にリポソーム中で送達され得る（Ｌａｎｇｅｒ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：１５２７〜１５３３（１９９０）；Ｔｒｅａｔら、Ｌｉｐｏｓｏｍｅｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ｏｆ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ Ｄｉｓｅａｓｅ ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ、Ｌｏｐｅｚ−ＢｅｒｅｓｔｅｉｎおよびＦｉｄｌｅｒ（編）、Ｌｉｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ、３５３〜３６５頁（１９８９）；Ｌｏｐｅｚ−Ｂｅｒｅｓｔｅｉｎ、同書、３１７〜３２７頁；一般に同書を参照のこと；を参照のこと）。
なお別の実施形態では、上記抗体は、徐放系で送達され得る。１つの実施形態では、ポンプが用いられ得る（Ｌａｎｇｅｒ、前述；Ｓｅｆｔｏｎ、ＣＲＣ Ｃｒｉｔ．Ｒｅｆ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｅｎｇ．１４：２０１（１９８７）；Ｂｕｃｈｗａｌｄら、Ｓｕｒｇｅｒｙ ８８：５０７（１９８０）；Ｓａｕｄｅｋら、Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２１：５７４（１９８９）参照のこと）。別の実施形態では、ポリマー性材料が用いられ得る（Ｍｅｄｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ、ＬａｎｇｅｒおよびＷｉｓｅ（編）、ＣＲＣ Ｐｒｅｓ．、Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ、Ｆｌａ（１９７４）；Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｄｒｕｇ Ｂｉｏａｖａｉｌａｂｉｌｉｔｙ、Ｄｒｕｇ Ｐｒｏｄｕｃｔ Ｄｅｓｉｇｎ ａｎｄ Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ、ＳｍｏｌｅｎおよびＢａｌｌ（編）、Ｗｉｌｅｙ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８４）；ＲａｇｅｒおよびＰｅｐｐａｓ、Ｊ．、Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｓｃｉ．Ｒｅｖ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．２３：６１（１９８３）を参照のこと；Ｌｅｖｙら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２２８：１９０（１９８５）；Ｄｕｒｉｎｇら、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．２５：３５１（１９８９）；Ｈｏｗａｒｄら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．７１：１０５（１９８９）もまた参照のこと）。なお別の実施形態では、徐放系は、治療標的の近傍に配置され得る。
本発明はまた、薬学的組成物を提供する。このような組成物は、治療的に有効な量の抗体、および生理学的に受容可能なキャリアを含む。特定の実施形態では、用語「生理学的に受容可能」は、連邦または州政府の監督官庁によって認可されているか、または米国薬局方、または動物（より詳細には、ヒト）における使用のために他に一般に認可された薬局方に列挙されていることを意味する。用語「キャリア」は、上記治療薬がそれとともに投与される希釈剤、アジュバント、賦型剤、またはビヒクルをいう。このような生理学的キャリアは、水およびオイルのような滅菌液体であり、このオイルとしては、石油、動物、植物または合成起源のオイル（例えば、ピーナッツ油、大豆油、鉱物油、ゴマ油など）が挙げられる。水は、上記薬学的組成物が静脈内に投与される場合、好ましいキャリアである。生理食塩水溶液およびデキストロース溶液およびグリセロール溶液もまた液体キャリア、特に、注射用溶液のためにとして用いられ得る。適切な薬学的賦型剤としては、スターチ、グルコース、ラクトース、スクロース、ゼラチン、マルト、コメ、小麦粉、チョーク、シリカゲル、ステアリン酸ナトリウム、モノステアリン酸グリセロール、タルク、塩化ナトリウム、乾燥スキムミルク、グリセロール、プロピレン、グリコール、水、エタノールなどが挙げられる。上記組成物はまた、所望であれば、微量の湿潤剤または乳化剤、またはｐＨ緩衝化剤を含み得る。これらの組成物は、溶液、懸濁液、エマルジョン、錠剤、ピル、カプセル、粉末、持続放出処方物などの形態をとり得る。この組成物は、伝統的な結合剤およびトリグリセリドのようなキャリアとともに座薬として処方され得る。経口処方物は、薬学的グレードのマンニトール、ラクトース、スターチ、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸ナトリウム、セルロース、炭酸マグネシウムなどのような標準的なキャリアを含み得る。適切なキャリアの例は、Ｅ．Ｗ．Ｍａｒｔｉｎによる「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」に記載されている。このような組成物は、患者への適正な投与のための形態を提供するように、適切な量のキャリアとともに、好ましくは、精製形態にある有効量の抗体を含む。この処方物は、投与の様式に適合すべきである。
１つの実施形態では、上記組成物は、慣用的な手順に従って、ヒトへの静脈内投与のために適合された薬学的組成物として処方され得る。代表的には、静脈内投与のための組成物は、滅菌等張水性緩衝液にある溶液である。必要な場合、この組成物はまた、可溶化剤および注射の部位で痛みを和らげるリグノカインのような局所麻酔剤を含み得る。一般に、これら成分は、別個に、または単位用量形態中で一緒に混合されて（例えば、活性薬剤の量を示すアンプルまたはサチェット（ｓａｃｈｅｔｔｅ）のような密封シールされたコンテナ中の凍結乾燥粉末または水のない濃縮物としてのいずれかで供給される。この組成物が注入によって投与されるべきとき、それは、薬学的グレードの滅菌水または滅菌生理食塩水を含む注入瓶で分散され得る。この組成物が注射によって投与される場合、注射のための滅菌水または生理食塩水のアンプルが、上記成分が投与の前に混合され得るように提供され得る。
本発明はまた、本発明の薬学的組成物の１つ以上の成分で充填された１つ以上のコンテナを備える薬学的パックまたはキットを提供する。必要に応じて、このようなコンテナ（単数または複数）とともに、医薬品または生物学的製品の製造、使用または販売を規制する政府系機関により処方された形態の注意書があり得、この注意書は、ヒトへの投与のための製造、使用または販売の、機関による認可反映する。
さらに、本発明の抗体は、異種ポリペフチド、薬物、放射性ヌクレオチド、またはトキシンのような種々のエフェクター分子に結合体化され得る。例えば、ＰＣＴ公開ＷＯ９２／０８４９５；ＷＯ９１／１４４３８；ＷＯ８９／１２６２４；米国特許第５，３１４，９９５号；およびＥＰ３９６，３８７を参照のこと。抗体またはそのフラグメントは、細胞毒素のような治療成分（例えば、細胞静止剤または細胞破壊剤）、治療剤あるいは放射活性金属イオン（例えば、２１３Ｂｉのような）αエミッターと結合体化され得る。細胞毒素または細胞毒素剤は、細胞に有害である任意の薬剤を含む。例としては、パクリタキソール、サイトカラシンＢ、グラミシジンＤ、エチジウムブロミド、エメチン、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド、ビンクリスチン、ビンブチラスチン、コルヒチン、ドクソルビシン、ダウノルビジン、ジヒドロキシアントラシンジオン、ミトキサントロン、ミトラマイシン、アクチノマイシンＤ、１−デヒドロテストステロン、グルココルチコイド、プロカイン、テトラカイン、リドカイン、プロプラノロール、およびピューロマイシンおよびそれらのアナログまたはホモログが挙げられる。治療薬剤としては、制限されないで、抗代謝産物（例えば、メトトレキセート、６−メルカプトプリン、６−チオグアニン、シタラビン、５−フルオロウラシルデカルバジン）、アルキル化剤（例えば、メクロレタミン、チオテパクロラムブシル（ｔｈｉｏｅｐａ ｃｈｌｏｒａｍｂｕｃｉｌ）、メルファラン、カルムスチン（ＢＳＮＵ）およびロムスチン（ＣＣＮＵ）、シクロソスファミド（ｃｙｃｌｏｔｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、ブスルファン、ジブロモマンニトール、ステプトゾトシン、マイトマイシンＣ、およびｃｉｓ−ジクロロジアミン白金（ＩＩ）（ＤＤＰ）シスプラチン）、アントラサイクリン（例えば、ダウノルビシン（以前はダウロマシイン）およびドキソルビシン、抗生物質（例えば、ダクチノマイシン（正式には、アクチノマイシン））、ブレオマシン、ミトラマシイン、およびアントラマイシン（ＡＭＣ））、および抗有糸分裂剤（例えば、ビンクリスチンおよびビンブラスチン）が挙げられる。
このような治療成分を抗体に結合体化する技法は周知であり、例えば、Ａｒｍｏｎら「Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｆｏｒ Ｉｍｍｕｎｏｔａｒｇｅｔｔｉｎｇ Ｏｆ Ｄｒｕｇｓ Ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ」、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａｎｄ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ、Ｒｅｉｓｆｅｌｄら（編）、２４３〜５６（Ａｌａｎ Ｒ．Ｌｉｓｓ、Ｉｎｃ．１９８５）；Ｈｅｌｌｓｔｒｏｍら、「Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｆｏｒ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ」、Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ（第２版）、Ｒｏｂｉｎｓｏｎら（編）、６２３〜５３頁（Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ、Ｉｎｃ．１９８７）；Ｔｈｏｒｐｅ、「Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｃａｒｒｉｅｒｓ Ｏｆ Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ａｇｅｎｔｓ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ：Ａ Ｒｅｗｖｉｅｓｗ」、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ’８４：Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｎｄ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ、Ｐｉｎｃｈｅｒａら（編）４７５〜５０６頁（１９８５）；「Ａｎａｌｙｓｉｓ、Ｒｅｓｕｌｔｓ、Ａｎｄ Ｆｕｒｔｈｅｒ Ｐｒｏｓｐｅｃｔｉｖｅ Ｏｆ Ｔｈｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｕｓｅ Ｏｆ Ｒａｄｉｏｌａｂｅｌｅｄ Ａｎｔｉｂｏｄｙ ｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｔｈｅｒａｐｙ」、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｆｏｒ Ｃａｎｃｅｒ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ａｎｄ Ｔｈｅｒａｐｙ、Ｂａｌｄｗｉｎら（編）、３０３〜１６頁（Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ １９８５）、およびＴｈｏｒｐｅら、「Ｔｈｅ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ Ａｎｄ Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ Ｏｆ Ａｎｔｉｂｏｄｙ−Ｔｏｘｉｎ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｓ」、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．６２：１１９〜５８（１９８２）を参照のこと。あるいは、抗体は、第２の抗体に結合体化され得、抗体ヘテロ結合体を形成する（例えば、Ｓｅｇａｌ、米国特許第４，６７６，９８０号を参照のこと）。
本発明の結合体は、所定の生物学的応答を改変するために用いられ得、上記治療剤または薬物成分は、古典的な化学的治療剤に制限されると解釈されるべきではない。例えば、上記薬物成分は、所望の生物学的活性を所有するタンパク質またはポリペプチドであり得る。このようなタンパク質としては、例えば、アブリン、リシンＡ、シュードモナス外毒素、またはジフテリア毒素のようなトキシン；腫瘍壊死因子のようなタンパク質、αインターフェロン、βインターフェロン、神経成長因子、血小板由来成長因子、組織プラスミノゲンアクチベーター、アポトーシス剤（例えば、ＴＮＦ−α、ＴＮＦ−β、ＡＩＭ Ｉ（国際公開番号ＷＯ９７／３３８９９を参照のこと）、ＡＩＭ ＩＩ（国際公開番号ＷＯ９７／３４９１１を参照のこと）、Ｆａｓリガンド（Ｔａｋａｈａｓｈｉら、Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｏｌ．、６：１５６７〜１５７４（１９９４））、ＶＥＧＩ（国際公開番号ＷＯ９９／２３１０５を参照のこと）、血栓性薬剤または抗血管形成薬剤（例えば、アンギオスタチンまたはエンドスタチン）；または、例えば、リンホカイン、インターロイキン−１（「ＩＬ−１」）、インターロイキン−２（「ＩＬ−２」）、インターロイキン−６（「ＩＬ−６」）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（「ＧＭ−ＣＳＦ」）、顆粒球コロニー刺激因子（「Ｇ−ＣＳＦ」）、またはその他の成長因子のような生物学的応答改変剤が挙げられる。
（抗体に基づく遺伝子治療）
本発明の別の局面において、抗体またはその機能的誘導体をコードする配列を含む核酸が、遺伝子治療により、ＩＬ１３の異常発現および／または活性にともなう疾患または障害を処置、阻害または予防するために投与される。遺伝子治療は、発現されるかまたは発現可能な核酸の被験体への投与によって実施される治療をいう。本発明のこの実施形態では、上記核酸は、治療効果を媒介するそれらのコードされたタンパク質を生成する。利用可能な遺伝子治療のための任意の方法が、本発明に従って用いられ得る。例示的な方法は、以下に記載される。
遺伝子治療の方法の一般的な総説には、Ｇｏｌｄｓｐｉｅｌら、Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｐｈａｒｍａｃｙ １２：４８８〜５０５（１９９３）；ＷｕおよびＷｕ、Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｙ ３：８７〜９５（１９９１）；Ｔｏｉｓｔｏｓｈｅｖ、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．３２：５７３〜５９６（１９９３）、Ｍｕｌｌｉｇａｎ、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６０：９２６〜９３２（１９９３）；およびＭｏｒｇａｎおよびＡｎｄｅｒｓｏｎ、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．６２：１９１〜２１７（１９９３）；Ｍａｙ、ＴＩＢＴＥＣＨ １１（５）：１５５〜２１５（１９９３）を参照のこと。
１つの局面では、上記化合物は、抗体をコードする核酸配列を含み、この核酸配列は、適切な宿主中で抗体またはそのフラグメントもしくはキメラタンパク質またはそれらの重鎖もしくは軽鎖を発現する発現ベクターの一部である。特に、この様な核酸配列は、抗体コード領域に作動可能に連結されたプロモーターを有し、このプロモーターは、誘導性または構成性であり、そして必要に応じて組織特異的である。
別の特定の実施形態では、核酸分子が使用され、その核酸分子において、抗体コード配列および任意のその他の所望の配列がゲノム中の所望の部位における相同的組換えを促進する領域によって隣接され、それにより、抗体をコードする核酸の染色体間発現を提供する（ＫｏｌｌｅｒおよびＳｍｉｔｈｉｅｓ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：８９３２〜８９３５（１９８９）；Ｚｉｊｌｓｔｒａら、Ｎａｔｕｒｅ ３４２：４３５〜４３８（１９８９））。特定の実施形態では、発現される抗体分子は、単鎖抗体である；あるいは、上記核酸配列は、抗体の重鎖および軽鎖の両方、またはそれらのフラグメントをコードする配列を含む。
患者中への核酸の送達は、直接的（この場合、患者が核酸または核酸を保持するベクターに直接曝される）か、または間接的（この場合、細胞は最初インビトロで核酸で形質転換され、次いで、患者に移植される）であり得る。これらの２つのアプローチは、インビボまたはエキソビボ遺伝子治療としてそれぞれ公知である。
特定の実施形態では、核酸配列はインビボで直接投与され、ここで、それは発現されてコードされた産物を産生する。これは、当該分野で公知の任意の多くの方法により達成され得る。その方法は、例えば、それらを適切な核酸発現ベクターの一部として構築すること、およびそれが細胞内に入るように、それを投与することによる。これは、例えば、欠損もしくは弱毒化レトロウイルスまたは他のウイルスベクターを用いる感染により（米国特許第４，９８０，２８６号）、または裸のＤＮＡの直接注入により、または微粒子照射（例えば、遺伝子銃；Ｂｉｏｌｉｓｔｉｃ、Ｄｕｐｏｎｔ）または脂質もしくは細胞表面レセプターもしくはトランスフェクト剤でのコーティング、リポソーム、マイクロパーティクル、もしくはマイクロカプセル中のカプセル化により、あるいはそれら核内へ移行することが既知なペプチドと結合させて投与することにより、またはそれらをレセプター媒介エンドサイトーシスを受けるリガンドへの連結して投与すること（例えば、ＷｕおよびＷｕ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２６２：４４２９〜４４３２（１９８７）を参照のこと）（これは、レセプターを特異的に発現する細胞型を標的にするために用いられ得る）などによって達成され得る。別の実施形態では、核酸−リガンド複合体が形成され得、リガンドが膜融合ウイルスペプチドを含んでエンドソームを破壊し、核酸がリソソーム分解するのを避けさせる。なお別の実施形態では、上記核酸は、特異的レセプターを標的にすることにより、細胞特異的取り込みおよび発現のためにインビボで標的にされ得る（例えば、ＰＣＴ公開ＷＯ ９２／０６１８０；ＷＯ９２／２２６３５；ＷＯ９２／２０３１６；ＷＯ９３／１４１８８、ＷＯ９３／２０２２１を参照のこと）。あるいは、上記核酸は、相同的組換えにより発現のために細胞内に導入されるか、または宿主細胞ＤＮＡ内に取り込まれ得る（ＫｏｌｌｅｒおよびＳｍｉｔｈｉｅｓ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：８９３２〜８９３５（１９８９）；Ｚｉｊｌｓｔｒａら、Ｎａｔｕｒｅ ３４２：４３５〜４３８（１９８９））。
特定の実施形態では、本発明の抗体をコードする核酸配列を含むウイルスベクターが用いられる。例えば、レトロウイルスベクターが用いられ得る（Ｍｉｌｌｅｒら、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．２１７：５８１〜５９９（１９９３）を参照のこと）。これらのレトロウイルスベクターは、ウイルスゲノムの正確なパッケージンクおよび宿主細胞ＤＮＡ中への組込みのために必要な成分を含む。遺伝子治療で用いられるべき抗体をコードする核酸配列は、１つ以上のベクター中のクローン化され、これは、患者中への遺伝子の送達を容易にする。レトロウイルスベクターのより詳細は、Ｂｏｅｓｅｎら、Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｙ ６：２９１〜３０２（１９９４）中に見出され得、これは、幹細胞を化学療法により耐性にするために、造血性幹細胞にｍｄｒｌ遺伝子を送達するためのレトロウイルスベクターの使用を記載している。遺伝子治療におけるレトロウイルスベクターの使用を説明する他の参考文献は：Ｃｌｏｗｅｓら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．９３：６４４〜６５１（１９９４）；Ｋｌｅｍら、Ｂｌｏｏｄ ８３：１４６７〜１４７３（１９９４）；ＳａｌｍｏｎｓおよびＧｕｎｚｂｅｒｇ、Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ４：１２９〜１４１（１９９３）；ならびにＧｒｏｓｓｍａｎおよびＷｉｌｓｏｎ、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｇｅｎ．ａｎｄ Ｄｅｖ．３：１１０〜１１４（１９９３）である。
アデノウイルスもまた、本発明で用いられ得る。アデノウイルスは、呼吸上皮に抗体を送達するために、本発明において特に魅力的なビビクルである。アデノウイルスは、自然に呼吸上皮に感染する。アデノウイルスに基づく送達系のための他の標的は、肝臓、中枢神経系、内皮細胞、および筋肉である。アデノウイルスは、非分割細胞を感染し得る利点を有している。ＫｏｚａｒｓｋｙおよびＷｉｌｓｏｎ、Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｇｅｎ．Ｄｅｖ．３：４９９〜５０３（１９９３）は、アデノウイルスに基づく遺伝子治療の総説を提示している。Ｂｏｕｔら、Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ５：３〜１０（１９９４）は、アカゲザルの呼吸上皮に遺伝子を導入するためのアデノウイルスベクターの使用を示した。遺伝子治療におけるアデノウイルスの使用の他の例は、Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５２：４３１〜４３４（１９９１）；Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄら、Ｃｅｌｌ ６８：１４３〜１５５（１９９２）；Ｍａｔｒａｎｇｅｌｉら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．９１：２２５〜２３４（１９９３）；ＰＣＴ公開ＷＯ９４／１２６４９；およびＷａｎｇら、Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ２：７７５〜７８３（１９９５）中に見出され得る。アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）もまた、遺伝子治療における使用のために提案されている（Ｗａｌｓｈら、Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．２０４：２８９〜３００（１９９３）；米国特許第５，４３６，１４６号；同第６，６３２，６７０号；同第６，６４２，０５１号）。
遺伝子治療への別のアプローチは、エレクトロポーレーション、リポフェクション、リン酸カルシウム媒介トランスフェクション、またはウイルス感染のような方法によって、組織培養中の細胞に遺伝子を移入することを含む。通常、移入の方法は、細胞への選択マーカーの移入を含む。細胞は、次いで、この移入された遺伝子を取り込み、そして発現しているような細胞を単離するための選択下に配置される。これらの細胞は、次いで、患者中に送達される。
この実施形態では、上記核酸は、得られる組換え細胞のインビボ投与の前に細胞中に導入される。このような導入は、当該技術分野で公知の任意の方法によって実施され得、この方法としては、上記核酸配列を含むウイルスまたは細菌ファージベクターでのトランスフェクション、エレクトロポーレーション、マイクロインジェクション、核酸配列を含むウイルスまたはバクテリオファージによる感染、細胞融合、染色体媒介遺伝子移入、マイクロセル媒介遺伝子移入、スフェロプラスト融合などが挙げられる。細胞中への外来遺伝子の導入のために当該技術分野で多くの技法が公知であり（例えば、ＬｏｅｆｆｌｅｒおよびＢｅｈｒ、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．２１７：５９９〜６１８（１９９３）；Ｃｏｈｅｎら、Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．２１７：６１８〜６１４（１９９３）；Ｃｌｉｎｅ、Ｐｈａｒｍａｃ．Ｔｈｅｒ．２９：６９〜９２ｍ（１９８５）を参照のこと）、そしてレシピエント細胞の必要な発生機能および生理学的機能が破壊されないことを条件に、本発明に従って用いられ得る。この技法は、上記核酸が細胞によって発現可能であり、そして好ましくはその細胞の子孫に伝播可能で、かつ発現可能であるように、この核酸の細胞への安定な移入を提供する。
得られる組換え細胞は、患者に、当該分野で公知の種々の方法によって送達され得る。組換え血液細胞（例えば、造血幹細胞または前駆体細胞）は、好ましくは、静脈内に投与される。使用のために想定される細胞の量は、所望の効果、患者の状態などに依存し、そして当業者によって決定され得る。
遺伝子治療の目的のために核酸が導入される細胞は、任意の所望の利用可能な細胞型を包含し、そして、上皮細胞、内皮細胞、ケラチノサイト、線維芽細胞、筋肉細胞、肝細胞；Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、単球、マクロファージ、好中球、好酸球、メガケラチノサイト、顆粒球のような血液細胞；種々の幹細胞または前駆体細胞、特に、例えば、骨髄、臍帯血、末梢血、胎性肝臓などから得られるような、造血性幹細胞または前駆体細胞が挙げられるが、これらに限定されない。
１つの実施形態では、遺伝子治療のために用いられる細胞は、患者に対し自系である。本発明の抗体をコードする核酸配列は、細胞中に、それらが細胞またはそれらの子孫によって発現可能であるように導入され、そしてこれら組換え細胞は、次いで、治療効果のためにインビボで投与される。特定の実施形態では、幹細胞または前駆体細胞が用いられる。インビトロで単離および維持され得る任意の幹細胞および／または前駆体細胞が、本発明のこの実施形態に従って潜在的に用いられ得る（例えば、ＰＣＴ公開ＷＯ９４／０８５９８；ＳｅｍｐｌｅおよびＡｎｄｅｒｓｏｎ、Ｃｅｌｌ ７１：９７３〜９８５（１９９２）；Ｒｈｅｉｎｗａｌｄ、Ｍｅｔｈ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏ．２１Ａ：２２９（１９８０）；およびＰｉｔｔｅｌｋｏｗおよびＳｃｏｔｔ．Ｍａｙｏ Ｃｌｉｎｉｃ Ｐｒｏｃ．６１：７７１（１９８６）を参照のこと）。
（実施例１：ＩＬ１３免疫グロブリンの調製：変異された不活性ヒトＩＬ１３／Ｆｃ（ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃ））
（Ａ．ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃのための発現プラスミドのクローニングおよび構築）
等しいかまたはより高い親和性をもつ、ＩＬ１３Ｒα１に結合したアミノ酸残基番号１３における変異（グルタミン酸からリンジンへ）をもつヒトＩＬ１３は、しかし、ＩＬ１３Ｒα１保持細胞を活性化する能力を失ったことが報告された（Ｔｈｏｍｐｓｏｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２７４：２９９４４（１９９９））。この変異した不活性なＩＬ１３（ＭＴ−ＩＬ１３と示される）を、ヒト胎児腎細胞２９３−Ｔ中で発現した。この精製された組換えタンパク質を、本発明における免疫原として用い、抗ＩＬ−１３モノクローナル抗体を生成した。２つのオリゴヌクレオチドプライマーは：
Figure 2007161724
 である。
ＭＴ−ＩＬ１３遺伝子に対応するオリゴヌクレオチド配列を合成し、そしてポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）におけるテンプレートとして用い、このＩＬ１３遺伝子をヒト精巣ｃＤＮＡライブラリー（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ、ＣＡ）からクローニングした。ＩＬ１３の推定されたシグナルペプチド配列を欠いたＰＣＲフラグメント（３４２塩基対）を、ｐＳｅｃＴａｇ／ＦＲＴベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）中に連結した。このｐＳｅｃＴａｇ／ＦＲＴベクターは、５’末端に分泌シグナルペプチドを、そして３’末端にヒトＦｃγ１（ヒンジ領域および定常領域ＣＨ２およびＣＨ３）配列を含んだ。この構築物の組成は、配列決定により確認した。
（Ｂ．トランスフェクトされた２９３Ｔ細胞からのＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃの産生）
ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃの一時的発現のために、精製されたプラスミドＤＮＡを、製造業者のプロトコールに従って、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）によって２９３Ｔ細胞中にトランスフェクトした。トランスフェンション７２時間後、トランスフェクトされた細胞からの培養上清液を精製のために収集した。ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃの安定な発現のために、細胞株を、Ｆｌｐ−Ｉｎ ２９３Ｔ細胞株（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて樹立した。発現を確認するために、細胞上清液を、ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）によって分析した。分離されたタンパク質を、ニトロセルロースメンブレンに移し、そして西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）結合体化マウス抗ヒトＩｇＧ（Ｆｃ）モノクローナル抗体（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）またはポリクローナルヤギ抗−ＩＬ１３抗体（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ）との反応より検出し、これらは次いでＨＲＰ−ロバ抗ヤギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ）で検出された。免疫反応性タンパク質を、増幅化学発光検出（Ｓｕｐｅｒｓｉｇｎａｌ Ｗｅｓｔ Ｐｉｃｏ Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ、Ｐｉｅｒｃｅ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）を用いて、フィルム上で同定した。
（Ｃ．ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃの精製）
ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃは、リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）で平衡化されたハイパー−ＤプロテインＡアフィニティーカラム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で精製した。このカラムに細胞培養上清液を付与した後、樹脂を２０カラム容量を超える量のＰＢＳで洗浄した。次いで、この樹脂をＳＣＣ緩衝液（０．０５Ｍクエン酸ナトリウム、０．５Ｍ塩化ナトリウム、ｐＨ６．０）で洗浄し、非結合のタンパク質を除去した。ＩＬ１３融合タンパク質を、次いで、溶出し（００５Ｍクエン酸ナトリウム、０．１５Ｍ塩化ナトリウム、ｐＨ３．０）、そしてＰＢＳ中で透析した。
ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃを含むアフィニティーカラムからの画分を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析した。これらタンパク質の純度を、クマシーブルー染色により分析し、そしてこれらタンパク質の同一性を、ヤギ抗ヒトＩｇＧ（Ｆｃ）抗体（Ｓｉｇｍａ）および抗ヒトＩＬ１３抗体（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）を用いるウェスタンイムノブロッティングにより分析した。
（実施例２：抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の生成）
雄のＡ／Ｊマウス（Ｈａｒｌａｎ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）、８〜１２週齢に、２００μＬのＰＢＳ（ｐＨ７．４）で完全フロイントアジュバント（Ｄｉｆｃｏ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｄｅｔｒｏｉｔ、ＭＩ）中の２０μｇのＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃを皮下注射した。２週間の間隔で、マウスを、不完全フロイントアジュバント中の２０μｇのＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃで２度皮下注射した。次いで、２週間後、そして屠殺の３日前に、マウスに、ＰＢＳ中の２０μｇの同じ免疫原で腹腔内注射した。１匹以上の抗原免疫化マウスから単離された脾臓細胞を、融合のために用いた。免疫化および融合の類似の手順もまた、免疫原としてのＥ．ｃｏｌｉ発現ヒトＩＬ１３（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）とともに用いた。
抗ＩＬ１３ ＭＡｂ ２２８Ｂ／Ｃ−１の生成に至る融合では、２匹の免疫化マウスからの２６．４×１０６脾臓細胞および５８．８×１０６脾臓細胞が合わせられた。各融合には、単一細胞の懸濁液を、免疫化マウスの脾臓から調製し、そしてＳｐ２／０骨髄腫細胞との融合のために用いた。１：１の比でＳｐ２／０および脾臓細胞を、５０％ポリエチレングリコール（Ｍ．Ｗ．１４５０）（Ｋｏｄａｋ、Ｒｏｃｈｅｓｔｅｒ、ＮＹ）および５％ジメチルスルホキシド（Ｓｉｇｍａ）を含む培地中で融合した。細胞を、次いで、１０％ウシ胎仔血清、１００単位／ｍＬのペニシリン、１００μｇ／ｍＬのストレプトマイシン、０．１ｍＭのヒポキサンチン、０．４μＭのアミノプテリン、および１６μＭのチミジンを補充したＤＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、ＣＡ）における２５０μｌの懸濁液あたり１．５×１０６脾臓細胞の濃度に調整した。２５０μｌの細胞懸濁液を、約５０の９６ウェルのマイクロカルチャープレートの各ウェルに添加した。約１０日後、培養上清液を、ＥＬＩＳＡにおけるＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃと反応性についてのスクリーニングのために抜き出した。
Ｉｍｍｕｌｏｎ ２（Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｃｈａｎｔｉｌｌｙ、ＶＡ）マイクロテストプレートのウェルを、精製ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃ（０．１μｇ／ｍＬ）を室温で一晩添加することによりコーティングした。このコーティング溶液を、プレートをはじいて除去した後、２００μＬのブロッキング／希釈緩衝液（２％ウシ血清アルブミンおよび０．０５％ＴＷＥＥＮ（登録商標）２０を含むＰＢＳ）を各ウェルに１時間添加し、非特異的部位をブロックした。１時間後、次いでウェルをＰＢＳＴ緩衝液（０．０５％ＴＷＥＥＮ（登録商標）２０を含むＰＢＳ）で洗浄した。５０マイクロリットルの培養上清液を各融合ウェルから集め、５０μＬのブロッキング／希釈緩衝液と混合し、そして次に、マイクロテストプレートの個々のウェルに添加された。１時間のインキュベーションの後、これらウェルをＰＢＳＴで洗浄した。次いで結合したマウス抗体を、ＨＲＰ結合体化ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ特異的）（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂ、Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ）との反応により検出し、そしてブロッキング／希釈緩衝液で１：２，０００に希釈した。０．１％の３，３，５，５テトラメチルベンジジン（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）および０．００３％過酸化水素（Ｓｉｇｍａ）を含むペルオキシダーゼ基質溶液を、発色のために３０分間ウェルに添加した。反応を、ウェルあたり、５０μＬの２Ｍ Ｈ２ＳＯ４の添加により終結した。反応混合物のＯＤ４５０を、ＢｉｏＴｅｋ ＥＬＩＳＡ Ｒｅａｄｅｒ（ＢｉｏＴｅｋ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ、Ｗｉｎｏｏｓｋｉ、ＶＭ）で測定した。
ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃスクリーニングの陽性ウェルからの培養上清液を、次いで、無関係のＦγ１融合タンパク質への陰性結合について試験した。最終的な陽性ウェルを、次いで、限界希釈による単一細胞クローニングのために選択した。モノクローナル抗体からの培養上清液を再試験し、ＥＬＩＳＡによりそれらの反応性を確認した。選択されたハイブリドーマを、撹拌フラスコ中で増殖し、そして使用した培養上清をプロテインＡアフィニティークロマトグラフィーによる抗体精製のために収集した。
精製された抗体は、４つのアッセイによって試験された：ｉ）２９３Ｔ細胞発現ＭＴ−ＩＬ１３／ＦｃとＥ．ｃｏｌｉ発現マウスＩＬ１３との交差反応性；ｉｉ）ＨＤＬＭ−２およびＬ−１２３６細胞のＩＬ１３−自己分泌増殖の阻害；ｉｉｉ）ＴＨＰ−１細胞中のＩＬ−１３誘導ＳＴＡＴ６リン酸化の阻害；およびｉｖ）ヒト単球上のＩＬ−１３制御ＣＤ１４およびＣＤ２３発現の阻害である。
７３の抗ＩＬ１３ＭＡｂを、ＭＴ−ＩＬ１３／ＦｃおよびＩＬ１３免疫化マウスに対して実施された融合から得た。これらのＭＡｂの３９を、ＥＬＩＳＡおよび細胞に基づくアッセイによる特徴付けのために精製した。これらの３９のＭＡｂのうち１３が、ＨＤＬＭ−２およびＬ−１２３６細胞の自己分泌ＩＬ１３誘導増殖を阻害した（実施例５におけるアッセイの説明および結果を参照のこと）。これらＭＡｂの４つが、ＥＬＩＳＡにおいてヒトＩＬ１３と非常に強く反応することを見出し、そして機能的細胞に基づくアッセイでヒトＩＬ１３に対して中和性であった。これらのＭＡｂを、２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３と称した。これらの抗体は、すべて、免疫原としてグリコシル化ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃを用いて生成した。
（実施例３：ＥＬＩＳＡにおける、抗ＩＬ１３モノクローナル抗体とヒトおよびマウスＩＬ１３との反応性）
種々の抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の反応性を、ＥＬＩＳＡによって試験した。９６ウェルマイクロテストプレートの異なるウェルを、Ｅ．ｃｏｌｉ発現非グリコシル化ヒトＩＬ１３（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）、２９３Ｔ細胞発現グリコシル化ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃ、またはＥ．ｃｏｌｉ発現マウスＩＬ１３（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）のいずれかで、ＰＢＳ中の１００μＬの０．１μｇ／ｍＬ ＩＬ１３タンパク質の添加によりコーティングした。室温で一晩インキュベーション後、これらウェルを、ＰＢＳＴＢ（２％ＢＳＡを含むＰＢＳＴ）で処理し、残りの結合部位を飽和した。これらウェルを次いでＰＢＳＴで洗浄した。
１００マイクロリットルの２倍で系列希釈された抗ＩＬ１３ＭＡｂ（０．５μｇ／ｍＬ（３．３３ｎＭ）〜０．０５ｎｇ／ｍＬ（０．０００３３ｎＭ））を、上記ウェルに室温で１時間添加した。抗ＩＬ１３ＭＡｂ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ−Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ製）をまた、陽性コントロールとして試験した。この抗体は、免疫原としてＥ．ｃｏｌｉ発現ヒトＩＬ１３を用いることにより生成した。アイソタイプが一致したマウス抗ＨＩＶ−１ ｇｐ１２０ ＭＡｂを、無関係の陰性コントロールとして用いた。上記ウェルを、次いで、ＰＢＳＴで洗浄した。結合された抗体は、希釈されたＨＲＰ−ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ）（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ）との室温での１時間のインキュベーションにより検出した。ペルオキシダーゼ基質溶液を、次いで、上記のように発色のために添加した。ＥＬＩＳＡリーダーを用いてＯＤ４５０を測定した。
図１は、ＥＬＩＳＡにおける、抗ＩＬ１３ＭＡｂの２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、および２２７−４３、および陰性コントロールの用量依存性結合を示す。これらのＭＡｂの中で、２２８Ｂ／Ｃ−１が、最も強い反応性を示した。図２は、ＥＬＩＳＡにおける抗ＩＬ１３ＭＡｂのＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃに対する用量依存性結合を示す。２２８Ｂ／Ｃ−１および２２８Ａ−４が、ＭＴ−ＩＬ１３／Ｆｃとの最も強い反応性を示し、その一方、２２７−２６および２２７−４３は、中程度の反応性を示した。
図１および２は、２２８Ｂ／Ｃ−１が、試験されたすべての抗ＩＬ１３ＭＡｂの中で、グリコシル化および非グリコシル化両方のヒトＩＬ１３に対して最も高い親和性を有することを示す。これらすべての抗ＩＬ１３ＭＡｂは、ＥＬＩＳＡにおいてマウスＩＬ１３と交差反応しなかった（データは示さず）。
（実施例４）
（ＪＥＳ１０−５Ａ２によるヒトＩＬ１３への２２８Ｂ／Ｃ−１−Ｈｒｐ結合の競合の欠如）
ＪＥＳ１０−５Ａ２および２２８Ｂ／Ｃ−１が、ヒトＩＬ１３上の同じエピトープに結合するか否かを取り扱うために、競合ＥＬＩＳＡを用いて、Ｅ．ｃｏｌｉ発現ヒトＩＬ１３への２２８Ｂ／Ｃ−１−ＨＲＰ結合に対するＪＥＳ１０−５Ａ２の影響を試験した。９６ェルマイクロテストプレートの９６ウェルの各ウェルを、１００μＬのＰＢＳ中０．１μｇ／ｍＬのＩＬ１３タンパク質とともにインキュベートした。室温で一晩のインキュベーションの後、これらウェルを、ＰＢＳＴＢ（２％ＢＳＡを含むＰＢＳＴ）で処理し、残りの結合部位を飽和した。これらウェルを、次いで、ＰＢＳＴで洗浄した。５０マイクロリットルの２倍系列希釈の２２８Ｂ／Ｃ−１およびＪＥＳ１０−５Ａ２（最終濃度２０μｇ／ｍＬ〜９．７６ｎｇ／ｍＬ）を、５０μＬの予備滴定した２２８Ｂ／Ｃ−１−ＨＲＰと（１：６，４００希釈で）混合した。その混合物を、次いで、ウェルに添加し、そして室温で１時間インキュベートした。次いで、上記のように、発色のためにペルオキシダーゼ基質溶液を添加した。ＯＤ４５０を、ＥＬＩＳＡリーダーを用いて測定した。
図３は、ＪＥＳ１０−５Ａ２が２２８Ｂ／Ｃ−１−ＨＲＰのヒトＩＬ１３への結合と競合しないことを示し、２２８Ｂ／Ｃ−１およびＪＥＳ１０−５Ａ２がヒトＩＬ１３の異なる部位に結合することを示す。
（実施例５）
（Ｌ−１２３６およびＨＤＬＭ−２細胞を用いるＩＬ１３自己分泌依存性増殖アッセイによる抗ＩＬ１３中和モノクローナル抗体のスクリーニング）
Ｌ−１２３６およびＨＤＬＭ−２は、Ｇｅｒｍａｎ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ（ＤＳＭＺ、Ｂｒａｕｓｃｈｗｅｉｇ、Ｇｅｒｍａｎｙ）から得られるホジキンリンパ腫細胞株である。これら細胞株はＩＬ１３を産生し、これは、次いで、自己分泌様式でそれらの細胞増殖を活性化する（Ｋａｐｐ Ｕら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８９：１９３９（１９９９））。
細胞を、異なる抗ＩＬ１３ＭＡｂ（０．２、０．０２および０．００２μｇ／ｍＬ）の存在または不在下で、５％ＣＯ２中３７℃で３〜５日間培養した（２５，０００細胞／ウェル）。次いで、細胞増殖を、テトラゾリウム化合物ＭＴＳ（Ｐｒｏｍｅｇａ、Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）を用いるアッセイによるか（ＯＤ４９０における読み取り値）、または３Ｈ−チミジン（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）の取り込みによるかいずれかにより測定した。
これら細胞株の培養への抗ＩＬ１３中和ＭＡｂの添加は、これら細胞により産生されるＩＬ１３の結合および不活性化により、それらの増殖を阻害することが期待された。図４に示された結果は、Ｌ−１２３５細胞の増殖についての、本発明の抗ＩＬ１３ＭＡｂの効果を示す。ＭＡｂ ２２８Ｂ／Ｃ−１は、試験された中和抗体の中で、用量依存性様式でＬ−１２３６細胞の増殖の最も高い阻害能力を示す。ＴＡ１−３７（免疫原としてＥ．ｃｏｌｉ発現ヒトＩＬ１３を用いて生成された抗ＩＬ１３ ＭＡｂ）は、０．２μｇ／ｍＬもの高い用量でさえ、いずれの阻害活性も有さなかった。類似の結果を、ＨＤＬＭ−２細胞から得た。
（実施例６）
（原発性ヒト単球上のＩＬ１３制御ＣＤ１４およびＣＤ２３発現に対するアッセイ）
ＩＬ１３は、ヒト単球におけるＣＤ１４発現の抑制およびＣＤ２３発現の上方制御を誘導する（ｄｅ Ｗａａｌ Ｍａｌｅｆｙｔら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１５１：６３７０（１９９３）、Ｃｈｏｍａｒａｔら、Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１７：１（１９９８））。末梢血白血球（ＰＢＬ）を、健常なヒトドナーの新鮮に収集したヘパリン処理全血から、Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ−１０７７（Ｓｉｇｍａ）中の密度勾配遠心分離によって単離した。５％ウシ胎仔血清を含むＲＰＭＩ−１６４０培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中に懸濁されたＰＢＬ（１．５×１０６）を、組換えＩＬ１３（最終１０ｎｇ／ｍＬ＝０．８１３ｎＭ）および抗ＩＬ１３モノクローナル抗体または無関係の抗体（３倍系列希釈、最終１２μｇ／ｍＬ＝８０ｎＭから）を含む９６ウェルの組織培養プレートの各ウェルに添加した。単球上のＣＤ１４発現またはＣＤ２３発現は、イキュベートする培地に０．８１３ｎＭのヒトＩＬ１３の添加により、それぞれ抑制または上方制御された。培地のコントロールは、組換えＩＬ１３なしのＲＰＭＩ−１６４０／ＦＢＳ培地を含んだ。
これら細胞を、５％ＣＯ２中３７℃で２日間培養した。これら細胞を、抗ＣＤ１４−ＦＩＴＣまたは抗ＣＤ２３−ＰＥ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ−Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）での染色のために回収した。単球集団におけるＣＤ１４およびＣＤ２３の発現レベルは、フローサイトメトリーによって測定され、そして中間値蛍光強度（ＭＦＩ）によって表した。
ヒト単球上のＩＬ１３抑制ＣＤ１４発現に対する抗ＩＬ１３ＭＡｂの影響は、図５に示される。試験されたすべての抗ＩＬ１３ＭＡｂの中で、２２８Ｂ／Ｃ−１は、ＣＤ１４発現に対するＩＬ１３の影響を阻害することで最も高い能力を有していた。ＩＬ１３の影響の完全な阻害は、０．３３ｎＭで達成された。ＭＡｂ２２７−２６および２２８Ａ−４の阻害活性は中程度であり、一方で、ＪＥＳ１０−５Ａ２の阻害活性は弱かった。ＩＬ１３のこの影響は、８０ｎＭでさえ、ＪＥＳ１０−５Ａ２によって完全には阻害されなかった。
ヒト単球上のＩＬ１３誘導ＣＤ２３の上方制御に対する抗ＩＬ１３ＭＡｂの効果は、図６に示される。ＣＤ１４発現に対する結果（図５）と同様に、２２８Ｂ／Ｃ−１は、試験された抗ＩＬ１３ＭＡｂの中でＣＤ２３発現に対するＩＬ１３の効果を阻害することで最も能力があった。２２８Ｂ／Ｃ−１による完全な阻害は、０．３３ｎＭで達成された。ＪＥＳ１０−５Ａ２の阻害能力は弱かった。
図５および６に提示された結果を基に、２２８Ｂ／Ｃ−１によるＩＬ１３の完全な阻害は、１：２（ＭＡｂ：ＩＬ１３）比のモル化学量論量で達成され得、そしてそれ故、２２８Ｂ／Ｃ−１はヒトＩＬ１３に対し非常に高い親和性の中和ＭＡｂである。
（実施例７）
（ＴＨＰ−１細胞におけるＩＬ１３誘導ＳＴＡＴ６リン酸化アッセイ）
ＩＬ１３は、骨髄細胞株ＴＨＰ−１（ＡＴＣＣ、Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ）を活性化し得、ＩＬ１３のシグナル伝達経路における重要なステップであるＳＴＡＴ６のリン酸化を誘導する（Ｍｕｒａｔａ Ｔら、Ｉｎｔ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１０：１１０３〜１１１０（１９９８））。上記抗ＩＬ１３ＭＡｂを、このアッセイでＩＬ１３の阻害について試験した。
ＴＨＰ−１細胞を、５％のウシ胎仔血清を補充したダルベッコの改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中で維持した。実験のその日に、細胞を洗浄し、そして血清を含まないＤＭＥＭ中、３７℃で５％ＣＯ２において２時間インキュベートした。８０μＬの血清を含まない培地中の０．３×１０６細胞を、次いで、９６ウェルの丸底プレートの各ウェルに添加した。１２０マイクロリットルの培地は、ヒトＩＬ１３（１０ｎｇ／ｍＬ＝０．８１３ｎＭの最終濃度）および抗ＩＬ１３ＭＡｂ（５倍系列希釈、０．５μｇ／ｍＬ＝３．３３ｎＭの最終濃度から）を含む。陰性コントロールウェルは、ＩＬ１３がないか、またはＩＬ１３およびアイソタイプ一致の無関係のマウスＭＡｂのいずれかを含んだ。
これら混合物を、３７℃にて５％ＣＯ２下で１０分間インキュベートした。プレートを、次いで、３００×ｇで３分間、４℃で遠心分離した。上清を捨てた後、細胞ペレットを１００μＬのＬａｅｍｍｌｉの非還元性サンプル緩衝液（ＳＤＳ−ＰＡＧＥローディング緩衝液、ＢｉｏＲａｄ、ＣＡ）中に再懸濁し、そして次に微量遠心分離チューブに移した。そのチューブを９５℃で５分間加熱し、次いで、１０，０００×ｇで、１０分間室温で遠心分離した。上清を集め、そして４〜２０％の勾配ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析した。分離されたタンパク質を、ＰＶＤＦメンブレンに写し、これを、次に、希釈マウス抗ヒトＳｔａｔ６（Ｙ６４１、リン特異的）ＭＡｂ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）とインキュベートした。
結合した抗体を、ＨＲＰ結合体化ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｆｃ）抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅｒａｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）によって検出した。免疫反応性タンパク質は、増幅化学発光検出（Ｓｕｐｅｒｓｉｇｎａｌ Ｗｅｓｔ Ｐｉｃｏ Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ、Ｐｉｅｒｅｃｅ）を用いて、フィルム上で同定した。図７は、ＴＨＰ−１細胞におけるＳｔａｔ６のＩＬ１３誘導リン酸化に対する抗ＩＬ１３ＭＡｂの効果の結果を示す。Ｓｔａｔ６は、０．８１３ｎＭのヒトＩＬ１３で処理されたＴＨＰ−１細胞において、リン酸化される。用量依存性のＳｔａｔ６リン酸化阻害を、細胞が２２８Ｂ／Ｃ−１、２２８Ａ−４、２２７−２６、２２７−４３およびＪＥＳ１０−５Ａ２で処理されたときに見出された。ＭＡｂ ２２８Ｂ／Ｃ−１は、試験された抗ＩＬ１３ＭＡｂの中で最も能力のある中和抗体である。２２８Ｂ／Ｃ−１による完全阻害は、０．６６７ｎＭと０．１３３ｎＭとの間の濃度で達成された。完全阻害のための２２８Ｂ／Ｃ−１とＩＬ１３との間のおおよそのモル化学量論量比は、１：２であった。これは、図５および６に示されたデータと一致している。
（実施例８）
（抗ＩＬ１３モノクローナル抗体をコードする重鎖および軽鎖遺伝子の分子クローニング）
ＱＩＡＧＥＮキット（Ｖａｌｅｎｃｉａ、ＣＡ）を用いて、総ＲＮＡをハイブリドーマ細胞から単離した。逆転写（第１鎖ｃＤＮＡ）反応を、以下のように実施した：１〜１．５ｍｇの総ＲＮＡを、１ｍｌの１０ｍＭ ｄＮＴＰ、５０ｎｇのランダムヘキサマー、およびＲＮａｓｅを含まない１２ｍＬの最終容量の水と混合した。
この反応混合物を、６５℃で５分間インキュベートし、そして直ちに１分間氷上に置いた。簡単に遠心分離した後、以下の試薬を添加した：４ｍＬの５×第１鎖緩衝液（２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．３、３７５ｍＭ ＫＣｌ、１５ｍＭ ＭｇＣｌ２）、２ｍＬの０．１ｍＭ ＤＴＴ、および１ｍＬのＲＮａｓｅＯＵＴ ＲＮａｓｅインヒビター（４０Ｕ／ｍｌ）。混合後、この反応物を室温で２分間インキュベートした。次いで、１ミリリットルのＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＲＴ（５０Ｕ／ｍｌ）を、２５℃で１０分間、次いで５０分４２℃でのインキュベーションのためにこの混合物に添加された。簡単に遠心分離した後、この反応物を１５分間７５℃でインキュベートし、逆転写酵素を不活性化した。次いで１マイクロリットルのＲＮａｓｅＨ（２Ｕ／ｍｌ）を添加し、そして反応物を２０分間３７℃でインキュベートし、ＲＮＡを破壊した。
重鎖および軽鎖の種々の領域を増幅するために、Ｏ’ＢｒｉｅｎおよびＪｏｎｅｓ（Ｏ’Ｂｒｉｅｎ Ｓ．およびＪｏｎｅｓ Ｔ．、「Ｈｕｍａｎｉｚｉｎｇ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｂｙ ＣＤＲ ｇｒａｆｔｉｎｇ」、Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｌａｂ ｍａｎｕａｌ、Ｅｄｓ．ＫｏｎｔｅｒｍａｎｎおよびＤｕｂｌｅ、Ｓ（２００１））に記載の方法を用いた。簡単に述べれば、５’プライマーを、シグナルペプチド領域から選択し（軽鎖について１１セットおよび重鎖について１２セットの縮重プライマー）、そして３’プライマーを、軽鎖または重鎖いずれかの定常領域から選択した。５’プライマーおよび３’プライマー（１０ｍＭの１．５ｍＬ）が、５ｍＬの１０×ＰＣＲ緩衝液（２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．８、２０ｍＭ ＭｇＳＯ４、１００ｍＭ ＫＣｌ、１００ｍＭ （ＮＨ４）２ＳＯ４、１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００、１ｍｇ／ｍＬ ヌクレアーゼを含まないＢＳＡ）、１ｍＬの先のように調製されたｃＤＮＡ、１ｍＬのＴｕｒｂｏ ｐｆｕ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）および水と混合されて、この反応物を５０ｍＬの総容量に調節した。ＰＣＲは以下のように実施した：９４℃で４分の１サイクル；９４℃で３０秒、５３℃で３０秒、および７２℃で４５秒の２５サイクル；および７２℃で７分の１サイクル。反応混合物を、１％のアガロースゲル中で電気泳動により分離した。
増幅されたＤＮＡフラグメントを精製し、そしてｐｃＤＮＡ３．１ベクター中にクローニングした。クローニングは、製造業者が示唆したプロトコール（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に従って、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ＴＯＰＯクローニングキットを用いて実施した。形質転換されたＥ．ｃｏｌｉの１５〜２０のコロニーを、プラスミド精製のために用いた。プラスミドは、Ｔ７プライマーを用いて配列決定した。重鎖および軽鎖についての優性な配列を、ハイブリダイゼーション変異誘発（Ｇｌａｓｅｒ Ｓ．ら、Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ（Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９９５））、Ｎｅａｒ ＲＩ、ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ １２：８８（１９９２））により、Ｍ１３ Ｆａｂ発現ベクター中にクローン化した。発現されたＦａｂの結合特性を、ＥＬＩＳＡにより確認した。図８〜１０は、それぞれ、２２８Ｂ／Ｃ、２２８Ａ−４、および２２７−２６に対するＶＨおよびＶＬ鎖アミノ酸配列を示す。
（実施例９）
（クローン２２８Ｂ／Ｃのヒト化）
（Ａ．一般的プロトコール）
マウス抗体２２８Ｂ／Ｃの可変領域をクローニングし、そして実施例８に記載のように配列決定した。ファージベクター中のキメラＦａｂを、マウス２２８Ｂ／Ｃの可変領域、およびヒトκ鎖の定常領域、およびヒトＩｇＧのＣＨ１部分を組み合わせたコントロールとして構築した。
ヒト化プロセスを開始するために、公知のヒト生殖系列遺伝子配列から選択された適切なｖ遺伝子配列を、１〜３のフレームワーク領域（ＦＭ１〜ＦＭ３）を提供するために選択し、そしてＷＯ０４／０７００１０（本明細書中に参考として援用される）に記載される規準に従って、適切なＪ遺伝子をフレームワーク４（ＦＭ４）を提供するために選択した。このテンプレートは、例えば、匹敵する全体長さ、ＣＤＲのサイズ、フレームワークとＣＤＴとの間の接続部に位置するアミノ酸残基、全体の相同性などに基づき選択され得る。選択されたこのテンプレートは、１以上の配列の混合物であり得るか、またはコンセンサステンプレートであり得る。
発現ベクターの構築は、以下の式を含んで生成された重鎖および／または軽鎖改変体を含む：
Figure 2007161724
 ここで、ＦＲＨ１、ＦＲＨ２、ＦＲＨ３、ＦＲＨ４、ＦＲＬ１、ＦＲＬ２、ＦＲＬ３およびＦＲＬ４は、生殖系列テンプレートから選択されたフレームワークテンプレート重鎖配列およびフレームワークテンプレート軽鎖配列の改変体を表し、そしてＣＤＲは、親抗体のそれらを表す。マウス親抗体と選択されたヒトテンプレート配列との間の差異を決定し、抗体Ｆａｂのライブラリーを生成するための基礎として機能させた。このライブラリーは、軽鎖について個々に生成し得、そして次に、または同時に重鎖について生成し得る。ＣＤＲ領域の親和性成熟もまた、フレームワークのヒト化と同時に、または逐次的に分析し得る。
改変体Ｆａｂのライブラリーを、（１）マウスアミノ酸残基、（２）選択されたヒト生殖系列遺伝子からのアミノ酸残基、または必要に応じて（３）マウスフレームワーク配列とは異なることが見出された選択された位置の各々で、ランダムに選択されたアミノ酸を含んで生成した。所望の改変体は、重複するオリゴヌクレオチドをアニーリングすることにより、そして次に目的であったフレームワーク位置で選択された残基を取り込むことにより生成した。アニールされた産物の増幅は、２つのプライマー（そのうちの１つがビオチン標識されていた）を用いて行った。このビオチンタグは、プライマーの一本鎖の精製のために用い、そしてこれは、Ｕテンプレートフォーマットにある目的のベクターを用いるＫｕｎｋｅｌに基づく変異誘発反応中の変異誘発オリゴとして用いた（Ｒｏｓｏｋ、Ｍ．Ｊ．ら、（１９９６）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２７１：２２６１１〜２２６１８）。アニーリングおよびプラスミドの伸長の後、反応物を、当初のテンプレートは切断するが、新たに合成された鎖は切断しない、唯一の制限酵素ＸｂａＩでの消化させた。このプラスミドは、増幅のためにコンピテント細胞にエレクトロポーレーションし、そしてファージ粒子の生成のために、ファージコンピテントＥ．ｃｏｌｉ細胞型と混合した。このプラスミド構築物は、Ｆａｂを合成し得、それは、上清液中に分泌される。個々のプラークを選択し、そして抗体を分析のために溶出した。
このライブラリーを、質および完全性について分析した。このライブラリーのランダムサンプリングを配列決定する際に、Ｖｋ（またはＶｈ）領域の正確な挿入を有した選択された多くの候補を決定した。この数を用い、ライブラリーの全体の効率を決定した。一旦、ライブラリーを構築すると、これら候補を、機能的ＥＬＩＳＡを基礎にしたアッセイを用いてスクリーニングし、どの候補がＩＬ１３に特異的な機能的なＦａｂを産生したかを決定した。キメラクローンに匹敵するＩＬ１３の活性を示すような候補を、再現性についてさらにアッセイした。いくつかの候補を配列決定して、上記標的とされたフレームワーク位置がヒト化のために如何に耐性であるかを決定した。
ライブラリーが代表的であると見出された後、改変体を結合親和性について分析し、そしてキメラコントロール抗体に匹敵するかまたはそれより大きい結合親和性を有することが見出された改変体を、配列決定した。分析された単離物が、フレームワーク中の選択された位置でヒト生殖系列遺伝子からの残基を含まなかった場合、このヒトアミノ酸残基は、その位置で耐性ではなかったと結論付けた。この時点で、マウスおよびヒトアミノ酸のみを試験した場合、別のＦａｂライブラリーを、ヒトテンプレート残基が見出されなかった位置でアミノ酸をランダム化して作製し得た。次いで適切な置換残基（非マウス）を有するＦａｂを選択し、そして完全ＭＡｂに転換し得る。さらに、コンセンサステンプレートを、開始フレームワークとして用い得る。
（Ｂ．ＩＬ１３モノクローナル抗体Ｖｋヒト化）
軽鎖（Ｖｋ）の可変領域のヒト化を最初に実施した。しかし、いずれかの鎖で開始し得るか、または両方の鎖を同時にヒト化し得る。選択されたヒトテンプレートは、ヒトテンプレート２であり、そしてそれらが機能的活性の損失なくしてヒト化され得るか否かを決定するために軽鎖内のＣＤＲに近接する９残基に関する効果の研究に関与した。第２ラウンドのスクリーニングのために研究された軽鎖上の位置は、４、９、１２、７３、８１、８２、８３、８４、および１０９であった。
マウステンプレート残基またはヒトテンプレート残基のいずれかでこれらの位置の各々を変動させて、ライブラリーを生成した。約８６０の改変体を、機能的ＥＬＩＳＡアッセイを用いてスクリーニングした。１８の候補のみが、キメラクローンに匹敵する機能を示した。これらの候補を、さらにアッセイした。１８のうち６の候補が、キメラクローンと比較して抗原に対してより大きな親和性を示し、そしてこれら６つを配列決定した。配列決定結果を図１１ＡおよびＢに提示し、そしてこれらの結果から、位置４、１２および８１はマウス残基を好む。
（Ｃ．Ｖｈヒト化）
候補抗体の全体の機能に対する重鎖フレームワーク残基の寄与を評価するために、ライブラリーを、マウスの軽鎖を維持しながら、親マウスとは異なるヒトＤＰ２７テンプレートフレームワーク内の１０の位置を変動して構築した。このライブラリーは、Ｖｈについて合成された重複するオリゴヌクレオチド、およびＰＣＲを用いるマウスＶｋの生成を用いて生成した。このＶｋおよびＶｈを、次いで、変異誘発を用いてＦａｂ発現ベクター中に挿入し、そしてこのライブラリーを、次いで、機能的Ｆａｂについてスクリーニングした。ライブラリーの複雑度は、（２１０／７０％）×３＝３８４０であった。
合計１０５６の候補を、９６ウェル形式のＥＬＩＳＡアッセイを用いてスクリーニングした。配列決定のために選択されたこのライブラリーからの候補は、スクリーニング結果から最も高い値を生成した候補であった。これらの高活性候補の５つを配列決定し、それらのヒト化のレベルを決定した。それらの配列は、図１２ＡおよびＢに提示されている。これらの結果から、重鎖上のフレームワーク残基の３つが、マウス残基を好んだ（番号２４、６８および９４）。
第２のフレームワーク研究は、ヒトテンプレートＮＥＷであった。ＶｋおよびＶｈの両方が同時にヒト化されたコンビナトリアルライブラリーを生成した。Ｖｋ上の９の残基をマウス残基とヒト残基との間で変動し、そして９の残基をまた、Ｖｈについて選択した。約５２００の候補（５５個の９６ウェルプレート）を、このライブラリーからスクリーニングした。このスクリーニングから、約３００の候補が、キメラクローンに匹敵する結果を得た。この群から、３０の候補を配列決定し、これらの機能的クローンのヒト化レベルを決定した。
軽鎖に対する配列決定結果が、図１１ＡおよびＢに提示される。重鎖配列は、図１２ＡおよびＢに提示される。Ｖｋ上の位置８３は、マウス残基を保持する高い発生率を有し、その一方、Ｖｈテンプレート中の数個の位置は、マウス残基を好んだ。特に、位置９４は、スクリーニングされた３０の候補のうち２９でマウス残基を保持した。いずれの候補も完全にヒト化されたフレームワークを有するようには見えないが、ＶｋまたはＶｈのいずれかで高度にヒト化されていた数個の可変領域を、さらなるヒト化のために用いる。最もヒト化されたＶｋを、最もヒト化されたＶｈと組み合わせ、機能的活性をアッセイした。（図１３を参照のこと）。
目的のＶｋおよびＶｈのフレームワーク残基を組み合わせた第２のライブラリーを、重鎖テンプレートとしてＤＰ２７を、そして軽鎖テンプレートとしてＨＴ２を用いて生成した。上記のように、問題の各位置でヒトまたはマウス残基のいずれかを有するヒトフレームワークを含んだ重複するオリゴヌクレオチドを合成した。これらのオリゴを混合し、次いでアニールして完全な可変領域を生成した。これら領域をＰＣＲにより増幅し、次いで一本鎖フラグメントにした。これらフラグメントをリン酸化し、次いで変異誘発反応を用い、これら可変領域をＭ１３を基礎にするベクター中に取り込んだ。このライブラリーを次いで、ＥＬＩＳＡを基礎にするアッセイにおいて、ＩＬ１３に特異的であった機能的Ｆａｂについてスクリーニングした。軽鎖よび重鎖についての配列を図１１ＣおよびＤ、ならびに１２ＣおよびＤにそれぞれ示す。
これらの配列決定結果から、Ｖｋ鎖は、全体がヒト残基に耐え得、そしてそれ故、この鎖は完全にヒト化されていた。重鎖について、２つの位置：位置２４および９４がヒト残基に耐えなかった。従って、重鎖可変領域は、約９８％がヒト化された。
（Ｄ．コンビナトリアルヒト化候補の生成）
いずれのライブラリーのスクリーニングから選ばれた候補も完全にヒト化されなかったので、ヒト化を操作した。所望のヒト化レベルが得られた一連の候補を生成した。ＨＴ２ライブラリーからの最もヒト化されたＶｋを、上記ＮＥＷまたはＤＰ２７ライブラリーからの最もヒト化されたＶｈと組み合わせた。次いでこれらのコンビナトリアル候補をアッセイし、最も高いヒト化レベルを保持しながらどれが特異的機能を維持したかを決定した。ＨＴ２−ＮＥＷから選択された候補は、重鎖についてＨＴ２−ＮＥＷ番号７３および軽鎖についてＨＴ２−ＮＥＷ番号１１５であった。ＨＴ２−ＤＰ２７軽鎖から選択された候補は、ＨＴ２−ＤＰ２７番号８９およびＨＴ２−ＤＰ２７番号１４４であり、そして重鎖についての候補は、ＨＴ２−ＤＰ２７番号１２３およびＨＴ２−ＤＰ２７番号２７６であった。ＨＴ２−ＤＰ２７については、構築物を、以下のように作成した：番号２７６Ｖｈとの番号８９Ｖｋおよび番号１２３Ｖｈとの番号８９Ｖｋ；番号２７６Ｖｈとの番号１４４Ｖｋおよび番号１２３Ｖｈとの番号１４４Ｖｋ。さらに、１つの構築物を、番号７３Ｖｈ ＮＥＷとの番号１４４Ｖｋ ＤＰ２７で作製し、ＨＴ２軽鎖とのＮＥＷおよびＤＰ２７相互作用が異なるか否かを決定した。
これらの組み合わせを、ＥＬＩＳＡによって試験し、さらなるヒト化に際し、機能のさらなる損失があるか否かを決定した。これらのアッセイのために、抗原ＩＬ１３が、限定された量でプレート上に捕獲された。抗ＩＬ１３Ｆａｂを次いで、既知の濃度でプレートに添加し、そしてプレートに１：３希釈で滴定した。結合は、Ｆａｂに特異的な二次抗体で検出した。図１３は、機能的アッセイ結果を示す。図１３Ａ−１１５Ｖｋ／７３Ｖｈ；図１３Ｂ−８９Ｖｋ／２７６Ｖｈ；図１３Ｃ−１４４Ｖｋ／２７６Ｖｈ；図１３Ｄ−１４４Ｖｋ／１２３Ｖｈ；および図１３Ｅ−１４４Ｖｋ／７３Ｖｈ。これらのデータから、この観察された結果は、ヒト化可変領域の操作された組み合わせが、Ｆａｂの抗原への結合に逆に影響しなかったことを示唆した。
図１１および１２中の結果は、ＨＴ２軽鎖が完全にヒト化され得、そしてＤＰ２７中２つの位置（２７および９４）を除くすべてはヒト化され得ることを示唆しているので、２つのマウス残基のみが残った理想的なヒト化候補を操作した。この特定の候補の生成に際し、上記クローンを、その親および他の候補と比較してアッセイし、機能の任意の損失が存在したか否かを決定した。図１４Ａに提示されるデータから、このヒト化された候補は、この高い程度のヒト化（８９Ｖｋ／２７６Ｇ）とともに機能の有意な損失を示さない。ヒト化はまた、ＨＴ２−ＮＥＷフレームワーク候補についても実施した。この候補は、重鎖上に残る２つのマウス残基が存在するので、９８％のヒト化レベルを有している。図１４Ｂは、この構築物についてＥＬＩＳＡ結果を示す（１１５Ｖｋ／７３Ｖｈ ＦＬ）。
２つの残存するマウス残基を置換することにより、８９Ｖｋ／２７６Ｇをさらにヒト化するための試みがなされた。これらの位置をヒト残基に変異するに際し、候補クローンを、ＥＬＩＳＡによってアッセイし、そして親と比較した。しかし、上記マウス残基を選択されたテンプレートの残基で置換する際に、それらを機能の有意な損失が観察された。従って、Ｖｈ上の２つの位置がランダム化され、これら２つの位置ですべての可能なアミノ酸を可能にする別のライブラリーを生成した。これらの候補を機能的ＥＬＩＳＡアッセイを用いてスクリーニングし、そして親クローン（８９Ｖｋ／２７６Ｇ）に匹敵する結果を生じた３０の候補を配列決定し、どのアミノ酸が標的とした位置に存在するのかを決定した。候補のリストとこの２つの位置のアミノ酸を以下に示す。
Figure 2007161724
 従って、このスクリーニングから、指定された位置で明らかに耐えられ、そしてなお機能の有意な損失を生じない数個のアミノ酸が存在する。従って、このフレームワーク残基を、マウス配列またはヒトフレームにいずれにも見出されないアミノ酸に変更することにより、完全に機能的なＦａｂが標的抗原への結合に対する有害な影響なしで生成された。このランダムライブラリーからさらに試験された候補は、ＲＬ−１９およびＲＬ−３６であった。
（実施例１０）
（ＣＤＲ最適化）
候補の抗ＩＬ１３抗体の最適フレームワーク配列を決定する際に、ＣＤＲの最適化を実施した。このプロセスのために、ＣＤＲアミノ酸配列をランダム化し、次いで上記ライブラリーをスクリーニングして親クローンと等しいか、親クローンより良好な機能的活性を有するような候補を同定した。このライブラリーについては、親の候補はＲＬ−３６（上記を参照のこと）であった。６つのＣＤＲをランダム化し、一度に１つの位置を、そして上記ライブラリーを機能的ＥＬＩＳＡを用いてスクリーニングした。強く反応する候補を、親ＣＤＲとの比較のために配列決定した。以下の表に列挙されるすべての特有の配列がまた、適切な配列番号識別子とともに図２０に見られることに注意されたい。
（Ａ．ＣＤＲ−Ｌ１最適化）
ＣＤＲ−Ｌ１は１５アミノ酸を含んでいた。これらの位置の各々を、変異誘発反応中で用いられるべく、当モル量で混合された合成オリゴヌクレオチドを用いてランダム化した。変異誘発オリゴヌクレオチドの取り込みの効率は、４０％であると決定された。この％を用い、スクリーニングされることが必要な候補の数は３６００であった。これらクローンは、機能的ＥＬＩＳＡを用いてアッセイし、そして匹敵し得る機能的活性を生じたようなクローンを配列決定した。スクリーニングされた多くの候補から、１６６の陽性クローンを同定した。このグループから、１０の候補を配列決定し、ＣＤＲ内の変化を決定した。以下に示される配列決定結果から、改良された親和性に至る位置１１および１４は、ＮからＱおよびＭからＬであることを得る。
Figure 2007161724
 （Ｂ．ＣＤＲ２−Ｌ２最適化）
ＣＤＲ−Ｌ２は７アミノ酸を含んでいた。このライブラリーは、上記に記載のように調製した。このライブラリーの効率は８０％であり、そして８４０クローンがアッセイされた。このアッセイから同定された陽性クローンの番号７５および１１を配列決定した。以下に示される結果から、位置および置換アミノ酸はランダムのようであったが、このＣＤＲ内の数個の位置が改良された活性を生じた。この結果は、ＣＤＲ−Ｌ２は、抗原結合部位から最も遠く、そしてそれ故、抗原結合の際に最も少ない影響を奏するという知見を支持する。
Figure 2007161724
 （Ｃ．ＣＤＲ−Ｌ３最適化）
ＣＤＲ−Ｌ３は９アミノ酸から構成されていた。このライブラリーは、生成に際し、５０％の効率を生じ、約１７００のクローンがスクリーニングされることが必要であった。このスクリーニングから、２５７の陽性候補を同定し、そして１０を配列決定した。これらの結果から、１つの位置のみが、親配列からの変化を生じた。数個の候補が、この位置変化が高度に好ましかったこと（ＮからＡ）を示唆した同じ配列を実証した。
Figure 2007161724
 （Ｄ．ＣＤＲ−Ｈ１最適化）
ＣＤＲ−Ｈ１は５アミノ酸を含んでいた。このライブラリーの効率は８０％であり、約６００の候補のみがスクリーニングされることを必要とした。このクスリーニングから、１３８の陽性クローンが存在し、そしてこれらクローンの１１を配列決定した。以下に列挙される結果から、このＣＤＲ内の第２の位置が、抗原結合の改良の最大の機会を与えるようであった。しかし、数個のアミノ酸が有利に結合に影響した。
Figure 2007161724
 （Ｅ．ＣＤＲ−Ｈ２最適化）
ＣＤＲ−Ｈ２は１６のアミノ酸を含んでいた。このライブラリーの効率は７０％であり、これは、２１００を超える候補がスクリーニングされる必要があることを意味した。このスクリーニングから、１９２の陽性候補を同定し、そして１３を配列決定して、このＣＤＲ内で生じた変化を決定した。以下に列挙する配列決定結果から、いくつかの位置が結合親和性を改良したが、親と有意に異なるように見えたアミノ酸変化はなかった。
Figure 2007161724
Figure 2007161724
 （Ｆ．ＣＤＲ−Ｈ３最適化）
ＣＤＲ−Ｈ３は１０アミノ酸を含んでいた。このＣＤＲは、一般に、抗原結合に最も大きい影響を課す１つであると考えられている。なぜなら、このループは、結合部位のほぼ中央にあるからである。このライブラリーは４０％の効率を有し、そして２４００の候補がスクリーニングされる必要があった。これらのうち、１７４の陽性クローンを同定し、そして１０を配列決定し、このＣＤＲ内の変化を決定した。以下に列挙される結果は、第３の位置におけるＹからＲへの変化が、結合における改善のために重要な１つであり得ることを示した。
Figure 2007161724
 （Ｇ．コンビナトリアルライブラリー）
一旦、抗原結合において最も大きい全体の改善を生じたＣＤＲ内の変化を決定すると、最良の候補が次に組み合わせられて、これらの変更が、結合を改善したか否かを見た。従って、候補は、すべての好ましいアミノ酸置換を組み合わせるように操作した。
このコンビナトリアルライブラリーを生成するために、初期クローンは、ＣＤＲ−Ｌ１−５９における改変（ＮからＱ）を取り込んだものであった。このクローンに、ＣＤＲ−Ｌ３についてＮからＡに（位置４）、ＣＤＲ−Ｈ１についてＹからＲ、Ｈ、ＫまたはＳいずれかに（位置２）、ＣＤＲ−Ｈ３についてＹからＲに（位置３）およびＤからＫまたはＳのいずれかに（位置９）、他の変化を作製した。ＣＤＲ−ｌ２またはＣＤＲ−Ｈ２には、変化を作製しなかった。このライブラリーからの１１００を超える候補を、機能的ＥＬＩＳＡアッセイを用いてスクリーニングした。合計１２０の候補を、親クローンより大きい活性を有するとして同定した。これらクローンの配列を図１５に示す。
これらのコンビナトリアル候補が機能を維持していたことを確認するために、競合アッイを実施した。このアッセイのために、ＩＬ１３がＥＬＩＳＡプレート上に捕獲された。精製されたＦａｂである候補は、変化する濃度で、一定濃度の標識されたキメラ抗ＩＬ１３Ｆａｂに予備混合された。この混合物を上記ＥＬＩＳＡプレートに添加した。プレートに結合したＩＬ１３に結合し得る標識されたキメラ抗ＩＬ１３を検出した。
この競合の結果から、アッセイされた２つの候補が、ＩＬ１３への結合についてキメラ候補（２２８ Ｂ／Ｃ番号３）と競合する等価な能力を示した（図１６）。無関係なＦａｂは５Ｉであり、これは、競合する能力のないことを示す。図１７は、３つの親和性が成熟した候補の配列を示す。
（実施例１１）
（エピトープマッピング）
抗ＩＬ１３ ＭＡｂ ２２８Ｂ／Ｃ−１は、立体配座エピトープに結合し、そしてカニクイザルＩＬ１３に、それがヒトＩＬ１３に結合するのと同じ高い親和性で結合する。しかし、２２８Ｂ／Ｃは、マウスＩＬ１３には結合しない。そこで、エピトープマッピングのために工夫された戦略は、このサルＩＬ１３の小部分を、対応するマウスＩＬ１３配列と交換することであった。重複するオリゴヌクレオチドを図１８に示されるように合成した。２ラウンドのＰＣＲを実施し、ＩＬ１３ハイブリッド構築物を、サルＩＬ１３の一部が、マウスＩＬ１３からの対応する配列によって置換されるようにアセンブルした（図１８）。最終のＰＣＲ増幅されたＩＬ１３コード領域を、ＴＯＰＯクローニングキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて、ｐｃＤＮＡ３．１ベクター中にＶ５タグとインフレームでクローニングした。すべてのＰＣＲ増幅された領域は、配列決定により、所望のドメインがスワップしている変異のみを含み、そしてこの発現ベクター中にさらなる所望されない変異が含まれないことが確認された。
抗ＩＬ１３ＭＡｂ結合エピトープは、アミノ酸番号４９から５６の８マーのペプチドＥＳＬＩＮＶＳＧ（配列番号１８）として同定した。このエピトープは、ヒトＩＬ１３中のＨｅｌｉｘ−Ｂおよびループ−ＢＣ中に位置している。ｃｙｎｏ−ＩＬ１３由来のエピトープを用いてマウスＩＬ１３中の対応する配列をスワップしたとき、得られるハイブリッドＩＬ１３分子は、当初のｃｙｎｏＩＬ１３のそれと類似親和性で２２８Ｂ／Ｃを結合し得、さらに、このペプチドにおいて残基番号４９〜５６間でｃｙｎｏまたはヒトＩＬ１３への２２８Ｂ／Ｃ ＭＡｂ結合を確認した。ヒト、ｃｙｎｏ、およびマウスＩＬ１３間の配列比較は、ヒトＩＬ１３中の３つの残基Ｉｌｅ５２、Ｖａｌ５４、Ｇｌｙ５６のみが保存されておらず、この８マーペプチドによるＩＬ１３と抗ＩＬ１３ ＭＡｂとの相互作用のための重要な残基は、これら３つの残基の１つ、または特定の組み合わせによって決定されることを示唆している。
このエピトープは、ペプチドスポット分析によってさらに確認された。完全なヒトＩＬ１３ペプチドが、セルロースメンブレン上でＳＰＯＴを経由して合成された一連の重複する１２マーペプチドで走査した。唯一の抗ＩＬ１３反応性ペプチドを、アミノ酸番号４４〜５６の１２マー、ＹＣＡＡＬＥＳＬＩＮＶＳ（配列番号１９）として同定した。これは、ドメインスワッピング実験により同定された領域と重複している。
（寄託）
以下の培養物は、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ、１０８０１ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ Ｖａ．２０１１０−２２０９ ＵＳＡ（ＡＴＣＣ）に寄託されている：
Figure 2007161724
 この寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブタペスト条約の規定、およびそれに基づく規則（ブタペスト条約）の下になされた。これは、寄託の日から３０年間の生存培養の維持を保証する。この生物は、ブタペスト条約の条項の下、ＡＴＣＣによって利用可能にされ、これは、関連する米国特許の発行に際し、公衆のこの培養の子孫の永久的かつ制限されない利用可能性を保証する。
本出願の譲受人は、寄託に関するこの培養物が、適切な条件下で培養されたとき、死滅または損失または破壊される場合、それが同じ培養物の生存標品での届出で迅速に置換されることに同意した。寄託された株の利用可能性は、任意の政府の当局の下で認可された権利に違反して本発明を実施するライセンスとして解釈されるべきではない。
先行する書面明細書は、当業者が本発明を実施することを可能にするに十分であると考えられる。本発明は、寄託された培養物によって範囲は制限されるべきではない。なぜなら、この寄託された実施形態は、本発明の１つの局面の例示として、そして機能的な等価である任意の培養が本発明の範囲内にあることが意図されるからである。本明細書中の材料の寄託は、本明細書中に含まれる書面の記載が本発明の任意の局面の実施を、そのベストモードを含んで可能にするに不十分であること、またはそれが提示する詳細な例示に請求項の範囲を限定すると解釈されるべきことの是認を構成するものではない。実際に、本明細書中に示されおよび記載されるものに加え、本発明の種々の改変が、先行する説明から当業者に明らかになり、そして添付の請求項の範囲内に入る。
当業者は、慣用を超えない実験を用いて、本明細書に記載される本発明の詳細な実施形態に対する多くの等価物を認識、または確実にし得る。そのような等価物は、添付の特許請求の範囲によって包含されることが意図される。
図１は、ヒトＩＬ１３への抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の結合を示す。 図２は、抗ＩＬ１３モノクローナル抗体変異体ＩＬ１３−Ｆｃの結合を示す。 図３は、ＭＡｂ ＪＥＳ１０−５Ａ２（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）による、ヒトＩＬ１３へのＭＡｂ ２２８Ｂ／Ｃ−１結合の阻害はないことを示す。 図４は、ホジキンリンパ腫Ｌ−１２３６細胞の増殖に対する抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の影響を示す。 図５は、ヒト単球におけるＣＤ１４発現のＩＬ１３誘導抑制に対する抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の影響を示す。 図６は、ヒト単球におけるＣＤ２３発現のＩＬ１３誘導上方調節に対する抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の影響を示す。 図７は、ＴＨＰ−１細胞におけるＳＴＡＴ６リン酸化に対するに対する抗ＩＬ１３モノクローナル抗体の影響を示す。 図８は、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のＶＨ領域およびＶＬ領域のアミノ酸配列を示す。 図９は、モノクローナル抗体２２８Ａ−４のＶＨ領域およびＶＬ領域のアミノ酸配列を示す。 図１０は、モノクローナル抗体２２７−２６のＶＨ領域およびＶＬ領域のアミノ酸配列を示す。 図１１Ａは、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のヒト化のための軽鎖可変領域の配列を示す。クローンＢ〜Ｒは、ＶＫおよびマウスＶＨのためのヒトテンプレート２で試験されたクローンを表す。ＨＴ２−ＮＥＷおよびＨＴ２−ＤＰ２７クローンは、ＶＫおよびＶＨ両方についてヒトフレームワークで構築された。 図１１Ｃは、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のヒト化のための軽鎖可変領域の配列を示す。 図１１Ｂは、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のヒト化のための軽鎖可変領域の配列を示す。 図１１Ｄは、モノクローナル抗体２２８Ｂ／Ｃ−１のヒト化のための軽鎖可変領域の配列を示す。 図１２Ａは、図１１中のクローンの対応する重鎖配列を示す。 図１２Ｃは、図１１中のクローンの対応する重鎖配列を示す。 図１２Ｂは、図１１中のクローンの対応する重鎖配列を示す。 図１２Ｄは、図１１中のクローンの対応する重鎖配列を示す。 図１３Ａは、コンビナトリアルヒト化候補に対するＥＬＩＳＡプロフィールを示す。 図１３Ｂは、コンビナトリアルヒト化候補に対するＥＬＩＳＡプロフィールを示す。 図１３Ｃは、コンビナトリアルヒト化候補に対するＥＬＩＳＡプロフィールを示す。 図１３Ｄは、コンビナトリアルヒト化候補に対するＥＬＩＳＡプロフィールを示す。 図１４Ａは、８９ Ｖｋ／２７６Ｇに対するＥＬＩＳＡプロフィールを示す。 図１４Ｂは、構築物１１５ Ｖｋ／７３ＶｈＦＬに対するＥＬＩＳＡ結果を示す。 図１５は、コンビナトリアルライブラリー候補の配列を示す。 図１６は、ＩＬ−１３への結合についてキメラ候補（２２８ Ｂ／Ｃ ＃３）と比較して示される、アッセイされた２つの候補（ＣＬ５およびＣＬ−１３）についての競合プロフィールを示す。無関係なＦａｂは５１であり、これは、競合する能力を示さない。 図１７は、３つの親和性成熟候補の配列を示す。 図１８は、ＩＬタンパク質配列のアラインメントを示す。 図１９は、Ｍａｂ２２８Ｂ／Ｃ−１の結合性エピトープを示す。 図２０は、ＣＤＲ改変体とそれらの個々の配列番号を示す。 図２１Ａは、選択候補組換え抗体について可変軽鎖配列および可変重鎖配列を示す。 図２１Ｂは、選択候補組換え抗体について可変軽鎖配列および可変重鎖配列を示す。

Claims (2)

  1. グリコシル化ヒトＩＬ１３および非グリコシル化ヒトＩＬ１３の両方に特異的かつ高親和性で結合し、マウスＩＬ１３を結合せず、そして約１：２のモル比（ＭＡｂ：ＩＬ１３）でヒトＬＩ１３活性を中和する、抗体またはその抗原結合性フラグメント。
  2. 明細書に記載の、抗体。
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