WO2003000883A1

WO2003000883A1 - Cell proliferation inhibitors containing anti-glypican 3 antibody

Info

Publication number: WO2003000883A1
Application number: PCT/JP2002/006237
Authority: WO
Inventors: Hiroyuki Aburatani; Tetsuo Nakamura; Masayuki Tsuchiya
Original assignee: Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha
Priority date: 2001-06-22
Filing date: 2002-06-21
Publication date: 2003-01-03
Also published as: JP2007238632A; EP2208784B1; ES2353335T3; CA2451493A1; KR100953520B1; DK1411118T3; US20040236080A1; US20070172488A1; CN1314803C; KR20080077295A; US8263077B2; DK2208784T3; KR100877176B1; CN1688692A; JP4281869B2; CN101240022A; US7744880B2; PT1411118E; DE60237929D1; JP2009024020A

Description

明細書

抗グリピカン 3抗体を含む細胞増殖抑制剤技術分野

本発明は、抗グリピカン 3抗体を有効成分として含有する細胞増殖抑制剤に関する。背景技術

細胞表面上に存在するへパラン硫酸プロテオグリカンの新しいファミリ一としてグリピカンファミリーの存在が報告されている。現在までのところ、グリピ力ンファミリーのメンバーとして、 5種類のグリピカン（グリピカン 1、グリピ力ン 2、グリピカン 3、グリピカン 4およびグリピカン 5 ) が存在することが報告されている。このファミリ一のメンバーは、均一なサイズ（約 60kDa) のコア夕ンパク質を持ち、特異的でよく保持されたシスティンの配列を共有しており、グリコシルフォスファチジルイノシトール (GPI) アンカーにより細胞膜に結合している。

中枢神経の発達における細胞分裂パターンが異常なショウジヨウバエメラノガスター（Drosophi la melanogas ter) 変異体の遺伝子スクリーニングにより、 Dal ly (divis ion abnormal ly delayed) 遺伝子が同定されており、 Dal lyの cMAは、ダリビカンの全ての特徴を含んでいる脊椎動物の膜型プロテオグリカン（GRIP s) と相同配列（24〜26%相同）を示す産物をコードするオープンリーディングフレーム（0RF) を表していることがわかっている。その後、 dal lyが dpp (decapen taplegia) レセプター機構を調節する役割を持つことが示唆されており、このことから哺乳動物のダリビカンが TGFと BMPのシグナル伝達を調節している可能性を示唆している。すなわち、グリピカンがへパリン結合性増殖因子（EGF、 PDGF、 B MP2、 FGF' s) 等）のいくつかの共同レセプ夕一として機能している可能性が示唆されていた。

ダリピカン 3は、ラットの小腸から発生的に調節されている転写物として分離され (Fi lmus, J. , Church, J. G. , and Buick, . n. (1988) Mol. Cel l Biol. 8, 4 243-4249) 、後にグリピカンファミリーの、分子量 69kDaのコアタンパク質を持つた、 GPI-結合型のへパラン硫酸プロテオグリカン、 OCT- 5として同定された（F i lmus, J. , Shi, I , Wong, Z. - Μ·， and Wong, M. J. (1995) Biochei. J. 311, 56 1-565) 。ヒトにおいても、ヒト胃癌細胞株よりグリピカン 3をコードする遺伝子が、 MXR- 7として単離されている（Hermaim Lage et al. , Gene 188 (1997) 151- 156) 。グリピカン 3はインスリン様増殖因子 _ 2とタンパク -タンパク複合体を形成し、この増殖因子の活動を調節することが報告されている（Pi l ia, G. e t a 1, (1996) Nat. Gene t. 12, 241-247) 。この報告は、グリピカン 3が必ずしもへパラン硫酸鎖によって増殖因子と相互作用しているのではないことを示唆している。

また、ダリピカン 3について肝細胞癌マーカ一として利用できる可能性の示唆は報告されているが (Hey- Chi Hsu et al. , CANCER RESEARCH 57, 5179-5184 (19 97) ) 、グリピカン 3と癌細胞増殖のはっきりとした関係についての知見はない。さらに、ダリビカンが、血管新生阻害剤として作用する可能性があるエンドス夕チンの受容体として機能している可能性も示唆されているが（Molecul ar Cel l (2001) , 7, 811-822) 、この機能と細胞増殖との関係も明らかにはなっていない。以上のように、グリピカン 3が細胞増殖に関与する示唆はあったものの、その細胞増殖の機構等については不明であり、ダリピカン 3を細胞増殖の調節に利用する試みも皆無であった。発明の開示

本発明は、抗グリピカン 3抗体を有効成分として含有する細胞増殖抑制剤を提供することを目的とする。

本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、抗グリピカン 3抗体が ADCC (抗体依存性細胞傷害、 ant ibody- dependent ce l l-mediated cytotoxic i ty) 活性、 CDC (補体依存性細胞傷害、 compl ement-dependent cytotoxic i ty) 活性により細胞増殖抑制活性を発揮することを見出し、本発明を完成させるに至った。また、抗グリピカン 3抗体が増殖因子の作用を阻害することによつても、細胞増殖抑制活性を発揮することも予測される。さらに、抗グリビカン 3抗体に放射性同位元素、化学療法剤、細菌由来トキシン等の細胞傷害性物質を結合することによつても、細胞増殖抑制活性を発揮し得る。すなわち、本発明は、

( 1 ) 抗グリピカン 3抗体を有効成分として含む細胞増殖抑制剤、

(2) 抗グリビカン 3抗体が細胞傷害活性を有する（1) の細胞増殖抑制剤、

(3) 細胞傷害活性が抗体依存性細胞傷害（ADCC) 活性または補体依存性細胞傷害（CDC)活性である（2) の細胞増殖抑制剤、

(4) 細胞が癌細胞である（1) 〜（3) のいずれかの細胞増殖抑制剤、

(5) 細胞が肝癌細胞、肺癌細胞、大腸癌細胞、乳癌細胞、前立腺癌細胞、白血病細胞、リンパ腫細胞および膝臓癌細胞からなる群から選択される（4) の細胞増殖抑制剤。

(6) 細胞が肝癌細胞である（5) の細胞増殖抑制剤、

(7) 抗体がモノクローナル抗体である（1) 〜（6) の細胞増殖抑制剤、

(8) 抗体がヒト型またはキメラ化されたものである（1) 〜（6) のいずれかの細胞増殖抑制剤、

(9) ダリビカン 3に結合する抗体、

(10) 細胞傷害活性を有する（9) の抗体、

(11) 肝癌細胞に対して細胞傷害活性を有する（10) の抗体、および

(12) 肝癌細胞株 HuH- 7に対して細胞傷害活性を有する（11) の抗体、である。 .

以下、本発明を詳細に説明する。

本発明は、抗グリビカン抗体を有効成分として含む細胞増殖抑制剤である。また、本発明は、抗グリピカン抗体を有効成分として含む細胞の異常増殖に基づく疾患、特に癌に対する治療に用い得る細胞増殖抑制剤である。

本発明の抗グリピカン 3抗体としては、例えばヒト型化抗体、ヒト抗体（W096 /33735号公報）又はキメラ抗体（特開平 4- 228089号公報）、マウス抗体などの公知の抗体のほか、本発明における抗体などが挙げられる。なお、抗体はポリクローナル抗体でもよいがモノクローナル抗体であることが好ましい。

本発明で使用される抗グリピカン 3抗体は、細胞増殖抑制能を有するものであれば、その由来、種類 (モノクローナル、ポリクローナル）および形状を問わない。

1. 抗グリピカン 3抗体本発明で使用される抗グリビカン 3抗体は、公知の手段を用いてポリクローナルまたはモノクローナル抗体として得ることができる。本発明で使用される抗グリピカン 3抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体は、ハイプリドーマに産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現べクタ一で形質転換した宿主に産生されるものを含む。この抗体はグリピカン 3と結合して、細胞増殖を抑制する抗体である。

このような抗体としては、本発明のハイプリドーマクローンにより産生されるモノクロナル抗体が挙げられる。

2 . 抗体産生ハイブリド一マ

モノクローナル抗体産生ハイブリド一マは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、グリピカン 3を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクロ一ナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。

具体的には、モノクローナル抗体を作製するには次のようにすればよい。

まず、抗体取得の感作抗原として使用されるヒトグリピカン 3を、 Lage, H. e t al.， Gene 188 ( 1997) , 15 1- 156に開示されたグリピカン 3 (MX 7 ) 遺伝子 Zアミノ酸配列を発現することによって得る。すなわち、グリピカン 3をコードする遺伝子配列を公知の発現べクタ一系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中または培養上清中から目的のヒトグリピカン 3タンパク質を公知の方法で精製する。

次に、この精製グリピカン 3タンパク質を感作抗原として用いる。あるいは、ダリビカン 3の部分ペプチドを感作抗原として使用することもできる。この際、部分べプチドはヒトグリビカン 3のァミノ酸配列より化学合成により得ることができる。

抗グリビカン 3抗体が ADCCの作用、 CDCによる作用、増殖因子活性の阻害により細胞増殖抑制活性を阻害することから、また抗グリピカン 3抗体に放射性同位元素、化学療法剤、細菌由来トキシン等の細胞傷害性物質を結合させることにより、細胞増殖を抑制し得ることから、本発明の抗グリピカン 3抗体の認識するグリピカン 3分子上のェピトープは特定のものに限定されず、グリピカン 3分子上に存在するェピトープならばどのェピトープを認識してもよい。従って、本発明の抗グリピカン 3抗体を作製するための抗原は、ダリビカン 3分子上に存在するェピトープを含む断片ならば、如何なる断片も用いることが可能である。

感作抗原で免疫される哺乳動物としては、特に限定されるものではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するのが好ましく、一般的にはげつ歯類の動物、例えば、マウス、ラット、ハムスター、あるいはゥサギ、サル等が使用される。

感作抗原を動物に免疫するには、公知の方法にしたがって行われる。例えば、一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内または皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原を PBS (Phosphate-Buf fered Sal ine) や生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものに所望により通常のアジュバント、例えばフロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に 4- 21日毎に数回投与する。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することもできる。

このように哺乳動物を免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合に付されるが、好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。

前記免疫細胞と融合される他方の親細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、 P3 (P3x63Ag8. 6 53) (J. Immnol. ( 1979) 123, 1548-1550) 、 P3x63Ag8U. 1 (Current Topi cs i n Microbiology and I匪 unology ( 1978) 81, 1-7) 、 NS-1 (Ko ler. G. and M i l s te in, C. Eur. J. I腿画 1. ( 1976) 6, 511-519) 、 MPC-11 (Margul ies. D. H. et al.， Ce l l ( 1976) 8, 405-415) 、 SP2/0 (Shulman, M. et al. , Nature ( 1 978) 276, 269-270) 、 FO (deSt. Groth, S. F. e t al. , J. Immunol. Me thods ( 1980) 35, 1-21) 、 S 194 (Trowbridge, I. S. J. Exp. Med. ( 1978) 148, 31 3-323) 、 R210 (Gal f re, G. et al. , Nature (1979) 277, 131-133) 等が好適に使用される。

前記免疫細胞とミエ口一マ細胞との細胞融合は、基本的には公知の方法、たとえば、ケーラーとミルスティンらの方法（Kohler. G. and Mi l s tein, C.、 Met ho ds Enzymol. (1981) 73, 3-46) 等に準じて行うことができる。より具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール

(PEG) 、センダイウィルス（HVJ) 等が使用され、更に所望により融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。

免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定することができる。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を 1 - 10倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適な RPMI 1640培養液、 MEM培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、さらに、牛胎児血清（FCS) 等の血清補液を併用することもできる。

細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め 37°C程度に加温した PEG溶液（例えば平均分子量 1000- 6000程度）を通常 30- 60% (w/v) の濃度で添加し、混合することによって目的とする融合細胞 (八イブリドーマ）を形成する。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイプリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。

このようにして得られたハイプリドーマは、通常の選択培養液、例えば HAT培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記 HAT培養液での培養は、目的とするハイプリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日〜数週間）継続する。ついで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイプリドーマのスクリーニングおよび単一クローニングを行う。

また、ヒ卜以外の動物に抗原を免疫して上記八イブリドーマを得る他に、ヒ卜リンパ球を in vi troでダリピカン 3に感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久分裂能を有するミエローマ細胞と融合させ、ダリビカン 3への結合活性を有する所望のヒト抗体を得ることもできる（特公平 1 - 59878号公報参照）。さらに、ヒト抗体遺伝子の全てのレパートリーを有するトランスジエニック動物に抗原となるダリビカン 3を投与して抗グリピカン 3抗体産生細胞を取得し、これを不死化させた細胞からダリピカン 3に対するヒト抗体を取得してもよい（国際特許出願公開番号 TO 94/25585 号公報、 W0 93/12227 号公報、 W092/03918 号公報、 W0 94/0 2602 号公報参照）。

このようにして作製されるモソクローナル抗体を産生するハイプリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。

当該ハイプリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリド —マを通常の方法にしたがい培養し、その培養上清として得る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。

3. 組換え型抗体

本発明では、モノクローナル抗体として、抗体遺伝子をハイプリドーマからクローニングし、適当なベクタ一に組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた組換え型のものを用いることができる（例えば、 Vand amine, A. M. et al. , Eur. J. Biochem. (1990) 192, 767-775, 1990参照）。具体的には、抗グリピカン 3抗体を産生するハイプリドーマから、抗グリピカン 3抗体の可変（V) 領域をコードする mRNAを単離する。 mRNAの単離は、公知の方法、例えば、グァニジン超遠心法（Chirgwin, J. M. et al. , Biodiemistry (1979) 18， 5294-5299) 、 AGPC法 (C omczynski, P. et al.， Anal. Biochem. (1987) 162, 156-159) 等により行って全 MAを調製し、 mRNA Purification Kit

(Pharmacia製）等を使用して目的の mRNAを調製する。また、 QuickPrep mRNA P urificaiion Kit (Pharmacia製）を用いることにより mRNAを直接調製することもできる。

得られた mRNAから逆転写酵素を用いて抗体 V領域の cDNAを合成する。 cDNAの合成は、 AMV Reverse Transcriptase First-strand cDNA Synthesis Kit (生ィ匕学工業社製）等を用いて行う。また、 cDNAの合成および増幅を行うには、 5'- Ampli FINDER RACE Kit (Clontech製）および PCRを用いた 5' -RACE法（Froliman, M. A. et al. , Pro Natl. Acad. Sci. USA (1988) 85, 8998—9002、 Belyavsky, A. et al. , Nucleic Acids Res. (1989) 17, 2919-2932) 等を使用することができる。得られた PCR産物から目的とする DNA断片を精製し、ベクター DNAと連結する。さらに、これより組換えベクターを作製し、大腸菌等に導入してコロニーを選択して所望の組換えベクターを調製する。そして、目的とする雇 Aの塩基配列を公知の方法、例えば、ジデォキシヌクレオチドチェインターミネーシヨン法等により確認する。

目的とする抗グリピカン 3抗体の V領域をコードする DNAを得たのち、これを、所望の抗体定常領域（C領域）をコードする丽 Aを含有する発現ベクターへ組み込む。

本発明で使用される抗グリピカン 3抗体を製造するには、抗体遺伝子を発現制御領域、例えば、ェンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクタ一に組み込む。次に、この発現ベクターにより、宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させる。

抗体遺伝子の発現は、抗体重鎖（H鎖）または軽鎖（L鎖）をコードする DNAを別々に発現ベクターに組み込んで宿主細胞を同時形質転換させてもよいし、あるいは H鎖および L鎖をコードする DNAを単一の発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転換させてもよい（W0 94/11523 号公報参照）。

また、組換え型抗体の産生には上記宿主細胞だけではなく、トランスジェニック動物を使用することができる。例えば、抗体遺伝子を、乳汁中に固有に産生される蛋白質（ャギカゼインなど）をコードする遺伝子の途中に挿入して融合遺伝子として調製する。抗体遺伝子が挿入された融合遺伝子を含む DNA断片をャギの胚へ注入し、この胚を雌のャギへ導入する。胚を受容したャギから生まれるトランスジエニックャギまたはその子孫が産生する乳汁から所望の抗体を得る。また、トランスジエニックャギから産生される所望の抗体を含む乳汁量を増加させるために、適宜ホルモンをトランスジエニックャギに使用してもよい（Ebert, K. M. et al. , Bio/Technology (1994) 12, 699-702) 。

4 . 改変抗体

本発明では、上記抗体のほかに、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ抗体、ヒト型化（Humanized) 抗体を使用できる。これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。

キメラ抗体は、前記のようにして得た抗体 V領域をコードする DNAをヒト抗体 C 領域をコードする Aと連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。この既知の方法を用いて、本発明に有用なキメラ抗体を得ることができる。

ヒト型化抗体は、再構成（reshaped) ヒト抗体とも称され、これは、ヒト以外の哺乳動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（CDR; complementari ty de ter mining region) をヒト抗体の相補性決定領域へ移植したものであり、その一般的な遺伝子組換え手法も知られている（欧州特許出願公開番号 EP 125023号公報、 W0 96/02576 号公報参照）。

具体的には、マウス抗体の CDRとヒト抗体のフレームワーク領域（f ramework r egion； FR) とを連結するように設計じた DNA配列を、 CDR及び FR両方の末端領域にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドをプライマ一として用いて PCR法により合成する（W098/13388号公報に記載の方法を参照）。

CDRを介して連結されるヒト抗体のフレームワーク領域は、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように、抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Sato, K. etal. , Cancer Res. ( 1993) 53, 851-856) 。

キメラ抗体及びヒト型化抗体の C領域には、ヒ卜抗体のものが使用され、例えば H鎖では、 C _T 1、 C r 2 , C T 3、 C T 4を、 L鎖では C K、 <3 λを使用することができる。また、抗体またはその産生の安定性を改善するために、ヒト抗体 C領域を修飾してもよい。

キメラ抗体は、ヒ卜以外の哺乳動物由来抗体の可変領域とヒ卜抗体由来の定常領域とからなる。一方、ヒト型化抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の相補性決定領域と、ヒ卜抗体由来のフレームワーク領域および C領域とからなる。ヒト型化抗体はヒ卜体内における抗原性が低下されているため、本発明の治療剤の有効成分として有用である。

5 . 抗体修飾物

本発明で使用される抗体は、抗体の全体分子に限られずダリピカン 3に結合し、細胞の増殖を抑制する限り、抗体の断片又はその修飾物であってもよく、二価抗体も一価抗体も含まれる。例えば、抗体の断片としては、 Fab、 F (ab' ) 2、 Fv、 1個の Fabと完全な Fcを有する Fab/c、または H鎖若しくは L鎖の Fvを適当なリンカーで連結させたシングルチェイン Fv (scFv) が挙げられる。具体的には、抗体を酵素、例えばパパイン、ペプシンで処理し抗体断片を生成させるか、または、これら抗体断片をコードする遺伝子を構築し、これを発現べクタ一に導入した後、適当な宿主細胞で発現させる（例えば、 Co, M. S. et al.， J. Immunol. (1994) 152， 2968-2976, Bet ter, M. &Hor i tz, A. H. Methods in Enzymology (1989) 178, 476-496, Academic Press, Inc.、 Plueckt un, A. SSkerra, A. Methods i n Enzymology (1989) 178, 476-496, Academic Press, Inc.、 Lamoyi, E. , Meth ods in Enzymology ( 1989) 121, 652 - 663、 Rousseaux, J. et al. , Methods in Enzymology (1989) 121, 663-669、 Bird, R. E. et al. , TIBTECH (1991) 9, 13 2 - 137参照) 。

scFvは、抗体の H鎖 V領域と L鎖 V領域とを連結することにより得られる。この sc Fvにおいて、 H鎖 V領域と L鎖 V領域は、リンカ一、好ましくはペプチドリンカ一を介して連結される（Huston, J. S. et al.、 Proc. Nat l. Acad. Sci. U. S. A. (1 988) 85, 5879-5883) 。 scFvにおける H鎖 V領域および L鎖 V領域は、本明細書に抗体として記載されたもののいずれの由来であってもよい。 V領域を連結するぺプチドリンカ一としては、例えばアミノ酸 12-19残基からなる任意の一本鎖べプチドが用いられる。

scFvをコードする DNAは、前記抗体の H鎖または H鎖 V領域をコードする丽、および L鎖または L鎖 V領域をコードする DNAのうち、それらの配列のうちの全部又は所望のアミノ酸配列をコードする DNA部分を錡型とし、その両端を規定するブライマ一対を用いて _PCR法により増幅し、次いで、さらにペプチドリンカ一部分をコードする DNA、およびその両端が各々 H鎖、 L鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合せて増幅することにより得られる。

また、一 scFvをコ一ドする丽 Aが作製されると、それらを含有する発現べクター、および該発現べクタ一により形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いることにより、常法に従って scFvを得ることができる。

これら抗体の断片は、前記と同様にしてその遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体の断片も包含される。

抗体の修飾物として、ポリエチレングリコール（PEG) や細胞傷害性物質等の各種分子と結合した抗グリピカン抗体を使用することもできる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体修飾物も包含される。このような抗体修飾物は、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。なお、抗体の修飾方法はこの分野においてすでに確立されている。 '

さらに、本発明で使用される抗体は、二重特異性抗体（bi spec i f ic ant ibod y) であってもよい。二重特異性抗体はグリピカン 3分子上の異なるェピトープを認識する抗原結合部位を有する二重特異性抗体であつてもよいし、一方の抗原結合部位がグリピカン 3を認識し、他方の抗原結合部位が化学療法剤、細胞由来トキシン、放射性物質等の細胞傷害性物質を認識してもよい。この場合、グリピカン 3を発現している細胞に直接細胞傷害性物質を作用させ腫瘍細胞に特異的に傷害を与え、腫瘍細胞の増殖を抑えることが可能である。二重特異性抗体は 2種類の抗体の HL対を結合させて作製することもできるし、異なるモノクローナル抗体を産生する八イブリドーマを融合させて二重特異性抗体産生融合細胞を作製し、得ることもできる。さらに、遺伝子工学的手法により二重特異性抗体を作製することも可能である。

6 . 組換え型抗体または改変抗体の発現および産生

前記のように構築した抗体遺伝子は、公知の方法により発現させ、取得することができる。哺乳類細胞の場合、常用される有用なプロモーター、発現させる抗体遺伝子、その 3'側下流にポリ Aシグナルを機能的に結合させて発現させることができる。例えばプロモーター Zェンハンサ一としては、ヒ卜サイトメガロウイリレス前期プロモーター/ェンノ、ンサ一 ( human cytomegalovirus immediate ear ly promoter/enhancer) を挙けることが、できる。

また、その他に本発明で使用される抗体発現に使用できるプロモーター/ェンハンサーとして、レトロウイルス、ポリオ一マウィルス、アデノウイルス、シミアンウィルス 40 (SV40) 等のウィルスプロモーター /ェンハンサー、あるいはヒトェロンゲーシヨンファクター 1ひ (HEF1 α ) などの哺乳類細胞由来のプロモーター Ζェンハンサ一等が挙げられる。

SV40プロモータ一/ェンハンサ一を使用する場合は Mul l iganらの方法（Nature (1979) 277, 108) により、また、 HEF1 αプロモーター Zェンハンサーを使用する場合は Mizushimaらの方法 (Nucleic Acids es. (1990) 18， 5322) により、容易に遺伝子発現を行うことができる。

大腸菌の場合、常用される有用なプロモーター、抗体分泌のためのシグナル配列及び発現させる抗体遺伝子を機能的に結合させて当該遺伝子を発現させることができる。プロモーターとしては、例えば laczプロモーター、 araBプロモーターを挙げることができる。 laczプロモ一夕一を使用する場合は Wardらの方法（Natu re (1098) 341， 544 - 546 ； FASEB J. (1992) 6, 2422-2427) により、あるいは a raBプロモーターを使用する場合は Bet terらの方法（Science (1988) 240, 1041- 1043) により発現することができる。

抗体分泌のためのシグナル配列としては、大腸菌のペリブラズムに産生させる場合、 pelBシグナル配列 (Le i, S. P. et al J. Bac teriol. (1987) 169, 437 9) を使用すればよい。そして、ペリブラズムに産生された抗体を分離した後、抗体の構造を適切に組み直して（refold) 使用する。

複製起源としては、 SV40、ポリオ一マウィルス、アデノウイルス、ゥシパピ口一マウィルス（BPV) 等の由来のものを用いることができ、さらに、宿主細胞系で遺伝子コピー数増幅のため、発現ベクターは、選択マ一力一としてアミノグリコシドトランスフェラーゼ（APH) 遺伝子、チミジンキナーゼ（TK) 遺伝子、大腸菌キサンチングァニンホスホリポシルトランスフェラーゼ (Ecogpt) 遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素（dMr) 遺伝子等を含むことができる。

本発明で使用される抗体の製造のために、任意の発現系、例えば真核細胞又は原核細胞系を使用することができる。真核細胞としては、例えば樹立された哺乳類細胞系、昆虫細胞系、真糸状菌細胞および酵母細胞などの動物細胞等が挙げられ、原核細胞としては、例えば大腸菌細胞等の細菌細胞が挙げられる。

好ましくは、本発明で使用される抗体は、哺乳類細胞、例えば CH0、 COS, ミエローマ、 BHK、 Vero、 HeLa細胞中で発現される。

次に、形質転換された宿主細胞を in vi troまたは in vivoで培養して目的とする抗体を産生させる。宿主細胞の培養は公知の方法に従い行う。例えば、培養液として、 DMEM、 MEM、 RPMI 1640, IMDMを使用することができ、牛胎児血清（FCS) 等の血清補液を併用することもできる。 7 . 抗体の分離、精製

前記のように発現、産生された抗体は、細胞、宿主動物から分離し均一にまで精製することができる。本発明で使用される抗体の分離、精製はァフィ二ティーカラムを用いて行うことができる。例えば、プロテイン Aカラムを用いたカラムとして、 Hyper D、 P0R0S、 Sep arose F. F. (Pharmac ia製）等が挙げられる。その他、通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよく、何ら限定されるものではない。例えば、上記ァフィ二ティーカラム以外のクロマトグラフィ一カラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析等を適宜選択、組み合わせることにより、抗体を分離、精製することができる（Ant ibodies A Laborator y Manual. Ed Harlow, David Lane, Cold Spr ing Harbor Laboratory, 1988) 。

8 . 抗体の活性の確認

本発明で使用される抗体の抗原結合活性（Ant ibod ies A Laboratory Manual. E d Harlow, David Lane, Cold Spr ing Harbor Laboratory, 1988) 、リカンドレセプ夕一結合阻害活性 (Harada, A. e t al. , Internat ional Immuno logy ( 199 3) 5, 681-690) の測定には公知の手段を使用することができる。

本発明で使用される抗グリビカン 3抗体の抗原結合活性を測定する方法として、 ELISA (酵素結合免疫吸着検定法）、 EIA (酵素免疫測定法）、 RIA (放射免疫測定法）あるいは蛍光抗体法を用いることができる。例えば、酵素免疫測定法を用いる場合、グリピカン 3をコーティングしたプレートに、抗グリピカン 3抗体を含む試料、例えば、抗グリピカン 3抗体産生細胞の培養上清や精製抗体を加える。アルカリフォスファタ一ゼ等の酵素で標識した二次抗体を添加し、プレートをィンキュペートし、洗浄した後、 P-ニトロフエニル燐酸などの酵素基質を加えて吸光度を測定することで抗原結合活性を評価することができる。

本発明で使用される抗体の活性を確認するには、抗グリピカン 3抗体の中和活性を測定する。

9 . 細胞傷害活性

本発明に使用する抗体は、細胞傷害活性として、 ADCC活性または CDC活性を有する。

ADCC活性は、エフェクター細胞と標的細胞と抗グリビカン 3抗体を混合し、 AD

CCの程度を調べることにより測定することができる。エフェクター細胞として例えば、マウス脾細胞やヒト末梢血や骨髄から分離した単核球等を利用することができ、標的細胞としてはヒト肝癌細胞株 HuH- 7等のヒト株化細胞を用いることができる。標的細胞をあらかじめ⁵¹ により標識し、これに抗グリビカン 3抗体を加えインキュベーションを行い、その後、標的細胞に対し適切な比のエフェクタ一細胞を加えィンキュベ一シヨンを行う。ィンキュベーシヨン後上清を採取し、上清中の放射活性をカウントすることにより ADCC活性を測定することができる。また、 CDC活性は、上述の標識標的細胞と抗グリビカン 3抗体を混合し、その後補体を添加してインキュベーションを行い、培養後に上清中の放射活性をカウントすることにより測定することができる。

抗体が細胞傷害活性を発揮するには、 Fc部分が必要であるので、本発明の細胞増殖阻害剤が、抗体の細胞傷害活性を利用したものである場合には、本発明に使用する抗グリピカン 3抗体は Fc部分を含んでいることが必要である。

1 0 . 血管新生抑制

本発明の抗グリピカン 3抗体を血管新生抑制に用いることもできる。

1 1 . 投与方法および製剤

本発明の細胞増殖抑制剤は、細胞の異常増殖に基づく疾患、特に癌に対する治療又は改善を目的として使用される。

本発明の細胞増殖抑制剤の対象となる癌細胞は、特に制限されないが、肝癌、肺癌、大腸癌、乳癌、前立腺癌、白血病、リンパ腫、塍臓癌が好ましく、肝癌が特に好ましい。

有効投与量は、一回につき体重 lkgあたり 0. OO lmg から lOOOmgの範囲で選ばれる。あるいは、患者あたり 0. 01〜100000mg/bodyの投与量を選ぶことができる。しかしながら、本発明の抗グリピカン 3抗体を含有する治療剤はこれらの投与量に制限されるものではない。

また、本発明の治療剤の投与時期としては、疾患の臨床症状が生ずる前後を問わず投与することができる。

本発明の抗グリピカン 3抗体を有効成分として含有する治療剤は、常法にしたがって製剤化することができ (Remington' s Pharmaceut ical Sc ience, lates t e di t ion, Mark Publ ishing Company, Eas ton,米国）、医薬的に許容される担体や添加物を共に含むものであってもよい。このような担体および医薬添加物の例として、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビ二ルポリマー、カルポキシメチルセルロースナトリウム、ポリアクリル酸ナトリゥム、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルポキシメチルスターチナトリウム、ぺクチン、メチルセルロース、ェチルセルロース、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、寒天、ポリエチレングリコール、ジグリセリン、グリセリン、プロピレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン（HSA) 、マンニトール、ソルビトール、ラクト一ス、医薬添加物として許容される界面活性剤等が挙げられる。

実際の添加物は、本発明治療剤の剤型に応じて上記の中から単独で又は適宜組み合わせて選ばれるが、もちろんこれらに限定するものではない。例えば、注射用製剤として使用する場合、精製された抗グリピカン 3抗体を溶剤、例えば生理食塩水、緩衝液、ブドウ糖溶液等に溶解し、これに吸着防止剤、例えば Tween80、 Tween20、ゼラチン、ヒト血清アルブミン等を加えたものを使用することができる。あるいは、使用前に溶解再構成する剤形とするために凍結乾燥したものであつてもよく、凍結乾燥のための賦形剤としては、例えば、マンニトール、ブドウ糖等の糖アルコールや糖類を使用することができる。図面の簡単な説明

図 1は、抗グリピカン 3抗体（K6534)の HuH- 7細胞に対する ADCC活性を示す図である。

図 2は、抗グリピカン 3抗体（K6511)の HuH- 7細胞に対する CDC活性を示す図である。

図 3は、 HuH- 7細胞上にダリビカンが発現していることを示す図である。

図 4 Aは、ヒ卜肺癌細胞株についての GPC3発現の FACS解析の結果を示す図である。抗グリピカン 3抗体 (K6534)で解析した結果である。

図 4 Bは、ヒト白血病細胞株についての GPC3発現の FACS解析の結果を示す図である。抗グリビカン 3抗体 (K6534)で解析した結果である。

図 4 Cは、ヒトリンパ腫細胞株についての GPC3発現の FACS解析の結果を示す図である。抗グリビカン 3抗体 (K6534)で解析した結果である。図 4 Dは、ヒト大腸癌細胞株についての GPC3発現の FACS解析の結果を示す図である。抗グリピカン 3抗体 (K6534)で解析した結果である。

図 4 Eは、ヒト乳癌細胞株についての GPC3発現の FACS解析の結果を示す図である。抗グリビカン 3抗体 (1(6534)で解析した結果である。

図 4 Fは、ヒト前立腺癌細胞株についての GPC3発現の FACS解析の結果を示す図である。抗グリピカン 3抗体 (K6534)で解析した結果である。

図 4 Gは、ヒト膝臓癌細胞株およびヒト肝癌細胞株についての GPC3発現の FACS 解析の結果を示す図である。抗グリビカン 3抗体（K6534)で解析した結果である。

発明を実施するための最良の形態

以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。伹し、本発明はこれら実施例等にその技術的範囲が限定されるものではない。実施例 1 ダリピカン- 3合成べプチドに対するモノクローナル抗体作製

ヒトダリピカン一 3蛋白のアミノ酸配列 355番目から 371番目のペプチド（RQYRS AYYPEDLFIDKK) を合成し、キーホール · リンぺット ·へモシァニン（KLH) に合成ペプチドをマレインイミドベンゾィルォキシサクシンイミド（MBS) 型架橋剤により結合し、免疫原とした。マウス（BALB/c、雌 6週齢）に 100 /i g/匹で 3回免疫し、血清中の抗体価を検定した。抗体価検定法として、ペプチド（0. 5 g) を固相化したプレートに希釈血清を反応させ、 HRP標識抗マウス抗体の反応を経て、基質を添加後に得られた発色を 450nmの吸光度を測定する方法（ペプチド固相 ELISA法）を使用した。抗体価を確認した後に、脾臓細胞を採取し、骨髄腫細胞（P3/X63_Ag8) との細胞融合（コーラ一， G、ミルスティン， C： Nature, 256 : 4 95 (1975) ) によりハイプリドーマを作製した。 5種類のハイプリドーマが産生するモノクローナル抗体を精製した後、ペプチド固相 ELISA法を用いてペプチドへの結合活性を測定し、結合活性の高い IgGl抗体（以下、 K6534) 及び IgG3抗体 (以下、 1(6511) を選択した。実施例 2 抗グリビカン 3抗体を用いた細胞増殖の抑制 ADCC (antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity) 活性、 CDC (complem ent-dependent cytotoxicity)活性の測定は Current protocols in Immunodogy, Chapter 7. Immunologic studies in humans, Editor, John E, Cologan et al. , Jolm Wiley &Sons, Inc., 1993の方法に従った。

1. エフェクター細胞の調製

CBA/Nマウス（8週令、ォス）から脾臓を摘出し、 RPMI1640培地（GIBC0社製）中で脾細胞を分離した。 10%ゥシ胎児血清（FBS、 HyClone社製）を含む同培地で洗浄後、細胞濃度を 5XlOVfflLに調製し、エフェクター細胞とした。

2. 補体溶液の調製

Baby Rabbit Complement (CEDARLANE社製）を 10% FBS含有應 EM培地（GIBC0社製）にて 10倍希釈し、補体溶液とした。

3. 標的細胞の調製

ヒト肝癌細胞株 HuH- 7 (JCRB No. JC B0403, ヒューマンサイエンス研究支援ノンク）を、 0.2mCiの⁵】 Cr - sodium chroma te (Amersliam Pharmacia Biotech社製）とともに、 10% FBS含有 DMEM培地中で 37°Cにて 1時間培養することにより放射性標識した。放射性標識の後、細胞を 10% FBS含有 RPMI1640培地にて 3回洗浄し、細胞濃度を 2X /mLに調製し、標的細胞とした。

4. ADCC活性の測定

96ゥエル ϋ底プレート（Beckton Dickinson社製）に、標的細胞と、抗グリピカン 3抗体 (K6534)を 50 zLずつ加え、氷上にて 15分間反応させた。その後、ェフエクタ一細胞 100 Lを加え、炭酸ガスインキュベーター内で 4時間培養した。抗体の終濃度は 0または lO zg/mLとした。培養後、の上清を回収し、ガンマ力ゥンター（COBRA II AUTO-GAMMA, MODEL D5005, Packard Instrument Company社製）で放射活性を測定した。細胞傷害活性 «) は（A-C)/(B - C) X100により求めた。 Aは各試料における放射活性（cpm)、 Bは 1% NP-40 (半井社製）を加えた試料における放射活性（cpm) 、 Cは標的細胞のみを含む試料の放射活性（cpm) を示す。実験は duplicateにて行い、平均値を算出した。

5. CDC活性の測定

96ゥエル平底プレー卜（Becton Dickinson社製）に、標的細胞と、抗グリピカン 3抗体 (K6511)をずつ加え、氷上にて 15分間反応させた。その後、補体溶液 100 Lを加え、炭酸ガスインキュベーター内で 4時間培養した。抗体の終濃度は 0または 3 g/mLとした。培養後、 100 Lの上清を回収し、ガンマカウンタ一で放射活性を測定した。細胞傷害活性（« は、「4. ADCC活性の測定」と同様にして求めた。実験は duplicateにて行い、平均値を算出した。

図 1に ADCC活性を、図 2に CDC活性を示すが、この結果より抗グリピカン 3抗体はヒト肝癌細胞株 HuH- 7に対して、 ADCC活性、 CDC活性を示し細胞増殖を抑制することが明らかになった。実施例 3 HuH- 7細胞上のダリピカン発現量の測定

約 5 X10⁵個の HuH- 7細胞を、 100/xLの FACS/PBS (lgのゥシ血清アルブミン（SIG MA社製を 1Lの CellWASH (Beckton Dickinson社製）に溶解して調製）に懸濁後、抗グリビカン 3抗体（K6511)またはコントロール抗体としてマウス IgG2a (Biogen esis社製）を

となるように加え、氷上にて 30分間静置した。 FACS/PBSにて洗浄後、 100 Lの FACS/PBSに懸濁し、 4 Lの Goat Anti-Mouse Ig FITC (Becton Dickinson社製）を加え、氷上にて 30分間静置した。

FACS/PBSにて 2回洗浄後、 lmLの FACS/PBSに懸濁し、フローサイトメーター（EP ICS XL、 BECKMAN COULTER) にて細胞の蛍光強度を測定した。

図 3にフローサイトメトリーの結果を示す。 HuH- 7細胞上でダリピカン 3が発現しており、このことは抗グリピカン 3抗体が細胞上に発現したダリビカン 3と結合して細胞増殖を抑制することを示している（図 3) 。実施例 4 FCM を用いた癌細胞パネルにおける GPC3発現解析

ヒ卜細胞株 ( Lung, Colon, Rectum, Breast, Prostate, Leukemia, Lymphoma, Myeloma, Pancreas, Liver) におけるグリピカン 3 (GPC3) の発現を FCM を用いて解析した。

細胞は 2 日間培養後アツセィを行った。付着細胞は、 Trypsin- EDTA (Cat. No. 25300-054, Lot 14210， GIBC0) を Cell dissociation buffer (Cat. No. 13150-016, Lot 109S554, GIBC0) で 10 倍に希釈した溶液を用いて回収した。回収した細胞を抗グリピカン 3抗体（K6534, 600 g/ml) または陰性対照 mIgG2 抗体（Biogenesis, M-IgG2a-i, Lot EA990719A, 1 mg/ml) と氷上で反応させた（最終抗体濃度 10 ug/ml)。細胞を洗浄後、 FITC標識抗マウス Ig 抗体 (Cat. No. 349031、 BD PharMingen) と氷上で反応させた（2

test) _D 細胞を洗浄後、その蛍光強度をフローサイトメ一夕一（EPICS XL、 BECKMAN COULTER) にて測定した。その結果、 A549、 NC I- H460、 NC I_H23、 NC I_H226、 DM S 114, EKVX、 HOP-62, NC I -H322M (以上、 L un g) 、 P30/ OHK、 BALL- 1、 THP-K P39/TSU (以上、 Leukemia) 、 MLMA、 Ramos, U-937 (以上、 Lymphoma) 、 SW480、 C0L0205, LoVo、 SW837 (以上、 Colon) 、 MDA- MB - 231、 SK- BR- 3、 MDA - MB - 468 (以上、 Breast) 、 LNCaP、 22' vl (以上、 Prostate) 、 MIAPaCa - 2 (Pancreas)、 HepG2 (Liver)において、 GPC3の発現が確認された。以上の結果から、本発明の細胞増殖抑制剤は、肺癌、大腸癌、乳癌、前立腺癌、白血病、リンパ腫、膝臓癌などの治療に有効であると考えられる。産業上の利用性

本発明により、抗グリピカン 3抗体を有効成分とする細胞増殖抑制剤が提供される。また、本発明により抗グリビカン 3抗体を有効成分とする癌細胞増殖抑制剤が提供される。抗グリピカン 3抗体はヒト肝癌細胞株 HuH- 7細胞上に発現したグリピカン 3と結合して細胞増殖を抑制することから、細胞増殖抑制剤、特に癌細胞抑制剤として有効である。 .

本明細書に引用されたすベての刊行物は、その内容の全体を本明細書に取り込むものとする。また、添付の請求の範囲に記載される技術思想および発明の範囲を逸脱しない範囲内で本発明の種々の変形および変更が可能であることは当業者には容易に理解されるであろう。本発明はこのような変形および変更をも包含することを意図している。

Claims

請求の範囲

I . 抗グリピカン 3抗体を有効成分として含む細胞増殖抑制剤。

2 . 抗グリピカン 3抗体が細胞傷害活性を有する請求項 1に記載の細胞増殖抑制剤。

3 . 細胞傷害活性が抗体依存性細胞傷害（ADCC) 活性または補体依存性細胞傷害（CDC)活性である請求項 2に記載の細胞増殖抑制剤。

4 . 細胞が癌細胞である請求項 1〜 3のいずれか 1項に記載の細胞増殖抑制剤。

5 . 細胞が肝癌細胞、肺癌細胞、大腸癌細胞、乳癌細胞、前立腺癌細胞、白血病細胞、リンパ腫細胞および塍臓癌細胞からなる群から選択される請求項 4に記載の細胞増殖抑制剤。

6 . 細胞が肝癌細胞である請求項 5に記載の細胞増殖抑制剤。

7 . 抗体がモノクローナル抗体である請求項 1〜 6のいずれか 1項に記載の細胞増殖抑制剤。

8 . 抗体がヒト型またはキメラ化されたものである請求項 1〜6のいずれか 1 項に記載の細胞増殖抑制剤。

9 . ダリピカン 3に結合する抗体。

1 0 . 細胞傷害活性を有する請求項 9記載の抗体。

I I . 肝癌細胞に対して細胞傷害活性を有する請求項 1 0記載の抗体。

1 2 . 肝癌細胞株 HuH-7に対して細胞傷害活性を有する請求項 1 1記載の抗体。