WO2013051294A1 - 糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原の血漿中からの消失を促進する抗原結合分子 - Google Patents

糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原の血漿中からの消失を促進する抗原結合分子 Download PDF

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茂郎 丹波
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Definitions

  • the present invention relates to an antigen-binding molecule in which uptake of an antigen into a cell is promoted, an antigen-binding molecule that can promote a decrease in antigen concentration in plasma, an antigen-binding molecule that can bind to an antigen multiple times, a drug
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule with improved kinetics, a pharmaceutical composition containing the antigen-binding molecule, and a method for producing them.
  • Non-patent Documents 1 and 2 various technologies have been developed as technologies applicable to second-generation antibody drugs, such as technologies that improve effector function, antigen binding ability, pharmacokinetics, stability, or reduce immunogenicity risk, etc. has been reported (Non-Patent Document 3). Since antibody drugs generally have a very high dose, it is considered that it is difficult to produce a subcutaneously administered preparation and that the production cost is high. As a method for reducing the dose of the antibody drug, a method for improving the pharmacokinetics of the antibody and a method for improving the affinity between the antibody and the antigen are conceivable.
  • Non-Patent Documents 4 and 5 As a method for improving the pharmacokinetics of an antibody, artificial amino acid substitution in the constant region has been reported (Non-Patent Documents 4 and 5). Affinity maturation technique (Non-patent Document 6) has been reported as a technique for enhancing antigen-binding ability and antigen-neutralizing ability. By introducing mutations into amino acids such as CDR regions of variable regions, binding activity to antigens is reported. Can be enhanced. In vitro biological activity can be improved or the dose can be reduced by enhancing the antigen-binding ability, and further in vivo drug efficacy can be improved (Non-patent Document 7).
  • the amount of antigen that can be neutralized per antibody molecule depends on the affinity, and it is possible to neutralize the antigen with a small amount of antibody by increasing the affinity, and increase the affinity of the antibody by various methods. Is possible (Non-Patent Document 6). Furthermore, if it can be covalently bound to an antigen and the affinity can be made infinite, it is possible to neutralize one molecule of antigen (two antigens in the case of bivalent) with one molecule of antibody. However, the conventional methods limit the stoichiometric neutralization reaction of one molecule of antigen (two antigens in the case of bivalent) with one molecule of antibody. It was impossible to neutralize.
  • Non-patent Document 9 there is a limit to the effect of increasing affinity.
  • a neutralizing antibody in order to maintain the neutralizing effect for a certain period of time, it is necessary to administer an amount of antibody equal to or greater than the amount of antigen produced in vivo during that period.
  • the affinity maturation technique alone has a limit in reducing the required antibody dose. Therefore, in order to maintain the antigen neutralizing effect for a target period with an amount of antibody equal to or less than the amount of antigen, it is necessary to neutralize a plurality of antigens with one antibody.
  • Patent Document 1 an antibody that binds to an antigen in a pH-dependent manner has been recently reported.
  • a pH-dependent antigen-binding antibody that binds strongly to antigen under neutral conditions in plasma and dissociates from antigen under acidic conditions within endosomes can dissociate from antigen within endosomes.
  • a pH-dependent antigen-binding antibody can bind to multiple antigens once it has been dissociated and then rebound to the plasma by FcRn, so it can repeatedly bind to multiple antigens with a single antibody. It becomes.
  • the retention of the antigen in plasma is very short compared to the antibody that is recycled by binding to FcRn.
  • the plasma retention of the antibody-antigen complex becomes long as with the antibody. Therefore, when the antigen binds to the antibody, the plasma retention is rather prolonged, and the plasma antigen concentration increases. In such a case, even if the affinity of the antibody for the antigen is improved, the disappearance of the antigen from the plasma cannot be promoted. It has been reported that the above-mentioned pH-dependent antigen-binding antibody is also effective as a method for promoting the disappearance of an antigen from plasma as compared with a normal antibody (Patent Document 1).
  • pH-dependent antigen-binding antibodies can bind to multiple antigens with a single antibody and promote the disappearance of antigens from plasma compared to normal antibodies. Has no effect. However, no antibody engineering technique has been reported so far that further improves the effect of repeatedly binding to the antigen of this pH-dependent antigen-binding antibody and the effect of promoting the disappearance of the antigen from plasma.
  • Non-patent Document 10 glycoproteins present in plasma bind to the sugar chain-specific receptor and disappear from the plasma.
  • the glycoprotein binds to the sugar chain receptor present on the cell surface and is taken into the cell, dissociates from the sugar chain receptor in the cell, and then is degraded by the lysosome. It is known to be recycled to the surface. That is, this glycoprotein and sugar chain receptor have a pH-dependent binding ability that strongly binds under neutral conditions in plasma and dissociates under acidic conditions in endosomes (Non-Patent Documents). 11, Non-Patent Document 12). In such pH-dependent binding between glycoprotein and sugar chain receptor, a sugar chain added to a glycoprotein is involved.
  • sugar chain and sugar chain receptor N-linked type
  • examples of the sugar chain include a sugar chain having galactose at the terminal and an asialoglycoprotein receptor (Non-patent Document 11), a sugar chain having mannose at the terminal and a mannose receptor (Non-patent Document 12), and the like.
  • Non-Patent Documents 13 and 14 there is no example implemented for the purpose of further improving the effect of promoting disappearance of antigen from plasma.
  • the present inventors have proposed a method for promoting the uptake of an antigen into a cell by an antigen-binding molecule having an antigen-binding activity, a method for binding an antigen-binding molecule to an antigen multiple times, and an antigen in plasma by administering the antigen-binding molecule.
  • Intensive research was conducted on how to promote the decrease in concentration and how to improve the retention of antigen-binding molecules in plasma.
  • the present inventors have an antigen-binding domain, a binding domain for FcRn, particularly human FcRn, and a domain that binds to a sugar chain receptor, and the binding to the sugar chain receptor is performed under the condition of ion concentration in the endosome.
  • Antigen-binding molecules that have weak binding ability compared to plasma ion concentration conditions can promote antigen uptake into cells, and compared to antigen-binding activity under plasma ion concentration conditions.
  • Antigen binding molecules that have an antigen-binding domain with weak antigen-binding activity under conditions of ion concentration in the early endosome can further promote the uptake of antigens into cells by antigen-binding molecules.
  • Can increase the number of antigens that can be bound promotes a decrease in plasma antigen concentration by administering antigen-binding molecules, improves pharmacokinetics of antigen-binding molecules It was found that the kill.
  • the present invention relates to a method for promoting the uptake of an antigen into a cell by an antigen-binding molecule, a method for increasing the number of antigens that can be bound by a single antigen-binding molecule, and its administration to reduce the antigen concentration in plasma.
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule capable of promoting a decrease in concentration, an antigen-binding molecule with improved pharmacokinetics, a pharmaceutical composition containing the antigen-binding molecule, a method for producing the same, and the like.
  • a method for producing an antigen-binding molecule comprising the following steps, (a) providing a polypeptide sequence of an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain and an FcRn-binding domain (b) identifying an amino acid sequence that is a candidate for a motif of a sugar chain receptor-binding domain in the polypeptide sequence (c) Designing a carbohydrate receptor binding domain motif comprising an amino acid sequence that differs from the amino acid sequence identified in (b) by at least one amino acid (d) A step of producing a gene encoding a polypeptide of an antigen-binding molecule containing the motif of the sugar chain receptor binding domain designed in (c) (e) Step (2) of recovering an antigen-binding molecule from the culture medium of a host cell transformed with the gene obtained in (d) [2] Using the enzyme further on the antigen-binding molecule obtained in (e) [1] manufacturing method including the process to process, [3] The production method of [1] or [2],
  • Including providing an antigen-binding domain having a high binding activity to the antigen under conditions of calcium ion concentration [10] The method according to any one of [1] to [9], wherein the antigen-binding domain includes an antibody variable region, [11] The method according to any one of [1] to [10], wherein the FcRn-binding domain includes an Fc region of an antibody. [12] The method according to [11], wherein the antibody is an IgG antibody, [13] The method according to [12], wherein the IgG antibody is any of IgG1, IgG2, IgG3, and IgG4.
  • An antigen bound to an antigen-binding molecule comprising contacting the antigen-binding molecule according to any one of [28] to [55] with a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro.
  • a method of incorporating the cell into the cell [59] An antigen-binding molecule per molecule comprising contacting the antigen-binding molecule according to any one of [28] to [55] with a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro.
  • a method for promoting dissociation of an antigen bound to an antigen-binding molecule selected from any of the following, including increasing the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and one or more binding domains for the sugar chain receptor How to be, (i) A method for promoting uptake of an antigen-binding molecule into a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro (ii) A method for promoting the uptake of an antigen-binding molecule into a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro (iii) A method for increasing the number of antigens to which an antigen-binding molecule per molecule binds in vivo or in vitro (iv) A method for increasing the ability of an antigen-binding molecule to eliminate an antigen in vivo or in vitro (v) a method for improving the pharmacokinetics of an antigen binding molecule,
  • FIG. 3 is a schematic diagram showing that IgG antibody molecules dissociate from soluble antigens in endosomes, thereby accelerating the disappearance of antigens and binding to new antigens again.
  • the IgG antibody molecule binds to the sugar chain receptor in the blood vessel and is taken into the cell, and dissociates from the soluble antigen together with the soluble chain receptor in the endosome, thereby accelerating the disappearance of the antigen and renewing it as a new antigen.
  • It is a schematic diagram which shows couple
  • FIG. 3 is a diagram showing a Biacore sensorgram showing the interaction of FH4-IgG1 with soluble human IL-6 receptor in Ca2 + 2 mM and Ca2 + 3 ⁇ M.
  • FIG. 4 is a diagram showing a Biacore sensorgram showing the interaction of 6RL # 9-IgG1 with soluble human IL-6 receptor in Ca2 + 2 mM and Ca2 + 3 ⁇ M.
  • FIG. 4 is a graph showing changes in antibody concentrations in normal mouse plasma of H54 / L28-IgG1, FH4-IgG1, and 6RL # 9-IgG1.
  • FIG. 4 is a graph showing changes in antibody concentrations in normal mouse plasma of H54 / L28-IgG1, FH4-IgG1, and 6RL # 9-IgG1.
  • FIG. 6 is a graph showing changes in soluble human IL-6 receptor (hsIL-6R) concentration in normal mouse plasma of H54 / L28-IgG1, FH4-IgG1, and 6RL # 9-IgG1.
  • FIG. 3 is a view showing the structure of heavy chain CDR3 of the Fab fragment of 6RL # 9 antibody determined by X-ray crystal structure analysis.
  • 2 is an ion exchange chromatogram of an antibody containing a human Vk5-2 sequence and an antibody containing an hVk5-2_L65 sequence in which the glycosylation sequence in the human Vk5-2 sequence is modified.
  • the solid line is a chromatogram of an antibody containing the human Vk5-2 sequence (heavy chain: CIM_H, SEQ ID NO: 63 and light chain: hVk5-2, a fusion molecule of SEQ ID NO: 6 and SEQ ID NO: 42), and the broken line is hVk5-2_L65.
  • 1 represents a chromatogram of an antibody having a sequence (heavy chain: CIM_H (SEQ ID NO: 63), light chain: hVk5-2_L65 (SEQ ID NO: 62)).
  • the meaning of the term “and / or” includes any combination of “and” and “or” as appropriate.
  • “the amino acid at positions 33, 55, and / or 96 is substituted” includes the following amino acid modification variations; (a) 33rd, (b) 55th, (c) 96th, (d) 33rd and 55th, (e) 33rd and 96th, (f) 55th and 96th, (g) 33rd And 55th and 96th.
  • Antigen is not limited to a specific structure as long as it includes an epitope to which an antigen-binding domain binds. In another sense, the antigen can be inorganic or organic.
  • antigen-binding molecules that improve pharmacokinetics by the method of the present invention include, for example, antigen-binding molecules that recognize membrane antigens such as receptor proteins (membrane-bound receptors, soluble receptors) and cell surface markers. Preferred examples include antigen-binding molecules that recognize soluble antigens such as cytokines.
  • Antigens include the following molecules: 17-IA, 4-1BB, 4Dc, 6-keto-PGF1a, 8-iso-PGF2a, 8-oxo-dG, A1 adenosine receptor, A33, ACE, ACE-2, Activin, Activin A, Activin AB, Activin B, Activin C, Activin RIA, Activin RIA ALK-2, Activin RIB ALK-4, Activin RIIA, Activin RIIB, ADAM, ADAM10, ADAM12, ADAM15, ADAM17 / TACE, ADAM8, ADAM9 , ADAMTS, ADAMTS4, ADAMTS5, addressin, aFGF, ALCAM, ALK, ALK-1, ALK-7, alpha-1-antitrypsin, alpha-V / beta-1 antagonist, ANG, Ang, APAF-1, APE, APJ , APP, APRIL, AR, ARC,
  • an epitope that means an antigenic determinant present in an antigen means a site on the antigen to which an antigen-binding domain in the antigen-binding molecule disclosed in the present specification binds.
  • an epitope can be defined by its structure.
  • the epitope can also be defined by the binding activity to the antigen in the antigen-binding molecule that recognizes the epitope.
  • the antigen is a peptide or polypeptide
  • the epitope can be specified by the amino acid residues constituting the epitope.
  • the epitope is a sugar chain
  • the epitope can be specified by a specific sugar chain structure.
  • a linear epitope is an epitope including an epitope whose primary amino acid sequence is recognized.
  • Linear epitopes typically include at least 3, and most commonly at least 5, such as about 8 to about 10, 6 to 20 amino acids in a unique sequence.
  • a conformational epitope is, in contrast to a linear epitope, an epitope in which the primary sequence of the amino acid containing the epitope is not a single defining component of the recognized epitope (eg, the primary sequence of amino acids does not necessarily define the epitope).
  • a conformational epitope may include an increased number of amino acids relative to a linear epitope.
  • the antibody recognizes the three-dimensional structure of the peptide or protein. For example, when a protein molecule is folded to form a three-dimensional structure, certain amino acid and / or polypeptide backbones that form a conformational epitope are juxtaposed to allow the antibody to recognize the epitope.
  • Methods for determining the conformation of an epitope include, but are not limited to, for example, X-ray crystallography, two-dimensional nuclear magnetic resonance spectroscopy, and site-specific spin labeling and electromagnetic paramagnetic resonance spectroscopy. For example, see Epitope Mapping Protocols in Methods in Molecular Biology (1996), Volume 66, Morris.
  • a test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain for IL-6R recognizes a linear epitope present in the IL-6R molecule.
  • a linear peptide comprising an amino acid sequence constituting the extracellular domain of IL-6R is synthesized.
  • the peptide can be chemically synthesized.
  • it can be obtained by genetic engineering techniques using a region encoding an amino acid sequence corresponding to the extracellular domain in IL-6R cDNA.
  • the binding activity between a linear peptide consisting of an amino acid sequence constituting the extracellular domain and a test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain for IL-6R is evaluated.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule to the peptide can be evaluated by ELISA using an immobilized linear peptide as an antigen.
  • the binding activity to the linear peptide can be revealed based on the level of inhibition by the linear peptide in the binding of the antigen-binding molecule to IL-6R-expressing cells. These tests can reveal the binding activity of the antigen-binding molecule to the linear peptide.
  • test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain for IL-6R recognizes a three-dimensional epitope.
  • cells expressing IL-6R are prepared.
  • a test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain for IL-6R comes into contact with an IL-6R-expressing cell, it binds strongly to the cell, while the IL-6R extracellular domain to which the antigen-binding molecule is immobilized
  • substantially not binding means 80% or less, usually 50% or less, preferably 30% or less, particularly preferably 15% or less of the binding activity to human IL-6R-expressing cells.
  • a test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain to IL-6R to IL-6R-expressing cells for example, the method described in Antibodies A Laboratory Manual (Ed Harlow, David Lane, Cold Spring Harbor Laboratory ( 1988) 359-420). That is, it can be evaluated by the principle of ELISA or FACS (fluorescence activated cell sorting) using IL-6R-expressing cells as antigens.
  • the binding activity of a test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain to IL-6R to IL-6R-expressing cells is quantitatively evaluated by comparing the signal level generated by the enzyme reaction. That is, a test antigen-binding molecule is added to an ELISA plate on which IL-6R-expressing cells are immobilized, and the test antigen-binding molecule bound to the cell is detected using an enzyme-labeled antibody that recognizes the test antigen-binding molecule.
  • test antigen-binding molecule binding activity against IL-6R-expressing cells can be compared by preparing a dilution series of test antigen-binding molecules and determining the antibody binding titer (titer) against IL-6R-expressing cells. Can be done.
  • the binding of the test antigen-binding molecule to the antigen expressed on the cell surface suspended in a buffer or the like can be detected by a flow cytometer.
  • a flow cytometer For example, the following devices are known as flow cytometers.
  • EPICS XL-MCL ADC EPICS XL ADC Cell Lab Quanta / Cell Lab Quanta SC (both are trade names of Beckman Coulter)
  • the following method may be mentioned as an example of a suitable method for measuring the binding activity of an antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain to IL-6R to an antigen.
  • staining is performed with a FITC-labeled secondary antibody that recognizes a test antigen-binding molecule reacted with cells expressing IL-6R.
  • the antigen-binding molecule is adjusted to a desired concentration and used. For example, it can be used at any concentration between 10 ⁇ g / ml and 10 ng / ml.
  • fluorescence intensity and cell number are measured by FACSCalibur (BD).
  • the amount of antibody bound to the cells is reflected in the fluorescence intensity obtained by analysis using CELL QUEST Software (BD), that is, the value of Geometric Mean. That is, by obtaining the Geometric Mean value, the binding activity of the test antigen binding molecule represented by the binding amount of the test antigen binding molecule can be measured.
  • BD CELL QUEST Software
  • test antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain for IL-6R shares an epitope with a certain antigen-binding molecule can be confirmed by competition for the same epitope.
  • Competition between antigen-binding molecules is detected by a cross-blocking assay or the like.
  • a competitive ELISA assay is a preferred cross-blocking assay.
  • IL-6R protein coated on the wells of a microtiter plate is preincubated in the presence or absence of a candidate competitive antigen binding molecule and then the test antigen. A binding molecule is added.
  • the amount of test antigen binding molecule bound to the IL-6R protein in the well is indirectly correlated with the binding ability of candidate competitive antigen binding molecules that compete for binding to the same epitope. That is, the higher the affinity of the competitive antigen-binding molecule for the same epitope, the lower the binding activity of the test antigen-binding molecule to the well coated with IL-6R protein.
  • the amount of the test antigen binding molecule bound to the well via the IL-6R protein can be easily measured by labeling the antigen binding molecule in advance.
  • biotin labeled antigen binding molecules are measured by using an avidin peroxidase conjugate and an appropriate substrate.
  • a cross-blocking assay using an enzyme label such as peroxidase is particularly referred to as a competitive ELISA assay.
  • Antigen-binding molecules can be labeled with other labeling substances that can be detected or measured. Specifically, radiolabels or fluorescent labels are known.
  • the competitive antigen binding molecule has at least 20 binding of the test antigen binding molecule comprising the antigen binding domain to IL-6R. %, Preferably at least 20-50%, more preferably at least 50%, the test antigen binding molecule binds to substantially the same epitope as the competitor antigen binding molecule or binds to the same epitope Competing antigen-binding molecules.
  • binding activity for example, it can be measured by comparing the binding activity of a test antigen-binding molecule and a control antigen-binding molecule against a linear peptide into which a mutation has been introduced in the above-mentioned ELISA format.
  • the binding activity to the mutant peptide bound to the column is quantified, and the antigen-binding molecule eluted in the eluate after the test antigen-binding molecule and the control antigen-binding molecule are allowed to flow through the column.
  • a method for adsorbing a mutant peptide on a column as a fusion peptide with GST, for example, is known.
  • the identified epitope is a steric epitope
  • cells that express IL-6R and cells that express IL-6R in which a mutation has been introduced into the epitope are prepared.
  • a test antigen-binding molecule and a control antigen-binding molecule are added to a cell suspension in which these cells are suspended in an appropriate buffer such as PBS.
  • an FITC-labeled antibody capable of recognizing the test antigen-binding molecule and the control antigen-binding molecule is added to the cell suspension washed with an appropriate buffer.
  • the fluorescence intensity and the number of cells stained with the labeled antibody are measured by FACSCalibur (BD).
  • the concentration of the test antigen-binding molecule and the control antigen-binding molecule is adjusted to a desired concentration by appropriately diluting with a suitable buffer and used. For example, it is used at any concentration between 10 ⁇ g / ml and 10 ng / ml.
  • the amount of labeled antibody bound to the cells is reflected in the fluorescence intensity obtained by analysis using CELLQUEST Software (BD), that is, the value of Geometric Mean. That is, by obtaining the Geometric Mean value, the binding activity of the test antigen-binding molecule and the control antigen-binding molecule represented by the binding amount of the labeled antibody can be measured.
  • “substantially does not bind to a mutant IL-6R-expressing cell” can be determined by the following method. First, a test antigen-binding molecule and a control antigen-binding molecule bound to a cell expressing mutant IL-6R are stained with a labeled antibody. The fluorescence intensity of the cells is then detected. When FACSCalibur is used as flow cytometry for fluorescence detection, the obtained fluorescence intensity can be analyzed using CELL QUEST Software.
  • the geometric mean comparison value (mutated IL-6R molecule ⁇ Geo-Mean value) that reflects the amount of binding of the test antigen-binding molecule to the mutant IL-6R-expressing cell obtained by the analysis is calculated for the IL-6R-expressing cell of the test antigen-binding molecule. Compare with the ⁇ Geo-Mean comparison value that reflects the amount of binding.
  • the concentration of the test antigen-binding molecule used in determining the ⁇ Geo-Mean comparison value for the mutant IL-6R-expressing cell and the IL-6R-expressing cell may be prepared at the same or substantially the same concentration. Particularly preferred.
  • An antigen-binding molecule that has been confirmed in advance to recognize an epitope in IL-6R is used as a control antigen-binding molecule.
  • the ⁇ Geo-Mean comparison value of the test antigen-binding molecule for the mutant IL-6R-expressing cells is at least 80%, preferably 50%, more preferably 30% of the ⁇ Geo-Mean comparison value of the test antigen-binding molecule for the IL-6R-expressing cells. %, Particularly preferably less than 15%, “substantially does not bind to mutant IL-6R-expressing cells”.
  • the calculation formula for obtaining the Geo-Mean value (Geometric Mean) is described in CELL QUEST Software User's Guide (BD biosciences).
  • the epitope of the test antigen-binding molecule and the control antigen-binding molecule can be evaluated to be the same if it can be substantially equated by comparing the comparison values.
  • Antigen-binding domain in the present specification, a domain having any structure can be used as long as it binds to an antigen of interest.
  • examples of such domains include, for example, variable regions of antibody heavy and light chains, modules called A domains of about 35 amino acids contained in Avimer, a cell membrane protein present in vivo (WO2004 / 044011, WO2005 / 040229), Adnectin (WO2002 / 032925) containing 10Fn3 domain, a domain that binds to the protein in fibronectin, a glycoprotein expressed on the cell membrane, IgG that constitutes a three-helix bundle consisting of 58 amino acids of ProteinA Affibody with binding domain as scaffold (WO1995 / 001937), on the molecular surface of ankyrin repeat (AR), which has a structure in which a turn containing 33 amino acid residues and two antiparallel helix and loop subunits are stacked repeatedly DARPins (Designed Ankyrin Repeat proteins) (WO2002
  • WO2003 / 029462 which are four loop regions that support one side of a barrel structure in which eight antiparallel strands highly conserved in lipocalin molecules such as hil gelatinase-associated lipocalin (NGAL) A leucine-rich-repeat (LRR) rich in leucine residues of the variable lymphocyte receptor (VLR), which has no immunoglobulin structure, as an acquired immune system for jawless eels such as lampreys and eels ))
  • LRR leucine-rich-repeat
  • VLR variable lymphocyte receptor
  • the recessed area (WO2008 / 016854) of the parallel sheet structure inside the horseshoe-shaped structure in which the modules are repeatedly stacked.
  • antigen-binding domain of the present invention include antigen-binding domains comprising antibody heavy and light chain variable regions.
  • antigen binding domains include “scFv (single chain Fv)", “single chain antibody”, “Fv”, “scFv2 (single chain Fv 2)", “diabody”, “Fab” “F (ab ′) 2”, domain antibody (dAb) (WO2004 / 058821, WO2003 / 002609), scFv-sc (WO2005 / 037989), Fc fusion protein, and the like.
  • Molecules containing the Fc region can be used as a binding domain for FcRn, particularly human FcRn.
  • molecules in which a human FcRn binding domain is fused to these molecules can also be used.
  • the antigen-binding domain in the antigen-binding molecule of the present invention can bind to the same epitope.
  • the same epitope can be present in a protein consisting of the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1 (IL-6R_PP; NP_000556.1), for example. Further, it can be present in a protein consisting of amino acids 20 to 365 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1.
  • the antigen binding domains in the antigen binding molecules of the present invention can bind to different epitopes.
  • different epitopes can exist in a protein consisting of the amino acid sequence set forth in SEQ ID NO: 1, for example.
  • bispecific antibodies refer to antibodies that have variable regions that recognize different epitopes within the same antibody molecule.
  • a bispecific antibody can be an antibody that recognizes two or more different antigens, or it can be an antibody that recognizes two or more different epitopes on the same antigen.
  • the antigen-binding domain of the present invention a domain involved in binding to a target (antigen) in a receptor (receptor) protein that binds to the target (antigen) can be preferably used.
  • the antigen-binding molecule may be a protein in which a receptor protein that binds to a target (antigen) is fused with a binding domain for FcRn, particularly FcRn, and a sugar chain receptor binding domain.
  • antigen-binding molecules include, for example, TNFR-Fc fusion protein, IL1R-Fc fusion protein, VEGFR-Fc fusion protein, CTLA4-Fc fusion protein, etc.
  • the antigen-binding molecule of the present invention is a fusion protein of these receptor proteins and a binding domain for FcRn, particularly human FcRn, the binding activity to the target molecule changes depending on the ion concentration conditions, and the binding activity to the sugar chain receptor, and
  • An antigen-binding molecule having binding activity to FcRn, particularly human FcRn can promote the uptake of antigen into cells and promote the reduction of the concentration of antigen in plasma by administration of the antigen-binding molecule.
  • the pharmacokinetics of such an antigen-binding molecule is improved, and it is possible to increase the number of antigens that can be bound by one antigen-binding molecule.
  • the antigen-binding domain of the present invention a domain involved in binding to a target in a natural or artificial ligand that binds to the target can be preferably used. That is, the antigen-binding molecule may be a molecule in which FcRn, in particular, a binding domain for FcRn and a sugar chain receptor-binding domain are fused to a natural or artificial protein ligand that binds to a target and has antagonist activity or neutralizing effect.
  • examples of artificial ligands include artificial ligands such as mutant IL-6 (EMBO J. (1994) 13, (24), 5863-70).
  • the binding to the target molecule changes depending on the condition of the ion concentration, and the antigen binding has binding activity to the sugar chain receptor, and binding activity to FcRn, particularly human FcRn Molecules can facilitate the uptake of antigen into cells and promote the reduction of antigen concentration in plasma by administration of antigen binding molecules.
  • the pharmacokinetics of such an antigen-binding molecule is improved, and it is possible to increase the number of antigens that can be bound by one antigen-binding molecule.
  • Specific specific means a state in which one molecule of a molecule that specifically binds does not show any significant binding to a molecule other than the one or more partner molecules to which it binds. Moreover, it is used also when an antigen binding domain is specific with respect to a specific epitope among several epitopes contained in a certain antigen. When an epitope to which an antigen binding domain binds is contained in a plurality of different antigens, an antigen binding molecule having the antigen binding domain can bind to various antigens containing the epitope.
  • an antibody refers to an immunoglobulin that is naturally occurring or produced by partial or complete synthesis.
  • the antibody can be isolated from natural resources such as plasma and serum in which it naturally exists, or from the culture supernatant of hybridoma cells producing the antibody, or partially or completely by using techniques such as genetic recombination Can be synthesized.
  • Preferred examples of antibodies include immunoglobulin isotypes and subclasses of those isotypes.
  • Nine types (isotypes) of IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA1, IgA2, IgD, IgE, and IgM are known as human immunoglobulins.
  • the antibody of the present invention may include IgG1, IgG2, IgG3, and IgG4.
  • a method for producing an antibody having a desired binding activity is known to those skilled in the art.
  • a method for producing an antibody that binds to IL-6R (anti-IL-6R antibody) is exemplified.
  • An antibody that binds to an antigen other than IL-6R can be appropriately prepared according to the following examples.
  • the anti-IL-6R antibody can be obtained as a polyclonal or monoclonal antibody using known means.
  • a monoclonal antibody derived from a mammal can be suitably prepared.
  • Mammal-derived monoclonal antibodies include those produced by hybridomas and those produced by host cells transformed with expression vectors containing antibody genes by genetic engineering techniques.
  • the monoclonal antibodies of the present invention include “humanized antibodies” and “chimeric antibodies”.
  • Monoclonal antibody-producing hybridomas can be prepared, for example, as follows by using known techniques. That is, a mammal is immunized according to a normal immunization method using IL-6R protein as a sensitizing antigen. The resulting immune cells are fused with known parental cells by conventional cell fusion methods. Next, hybridomas that produce anti-IL-6R antibodies can be selected by screening monoclonal antibody-producing cells by conventional screening methods.
  • IL-6R_PN IL-6R_PN
  • SEQ ID NO: 1 used as a sensitizing antigen for antibody acquisition.
  • IL-6R protein can be obtained. That is, an appropriate host cell is transformed by inserting a gene sequence encoding IL-6R into a known expression vector.
  • the desired human IL-6R protein is purified from the host cell or culture supernatant by a known method. In order to obtain soluble IL-6R from the culture supernatant, for example, a soluble form as described by Mullberg et al. (J.
  • IL-6R polypeptide sequence represented by SEQ ID NO: 1 which is IL-6R
  • a protein consisting of amino acids 1 to 357 is expressed instead of the IL-6R protein represented by SEQ ID NO: 1. Is done. Purified natural IL-6R protein can also be used as a sensitizing antigen as well.
  • the purified IL-6R protein can be used as a sensitizing antigen used for immunization against mammals.
  • a partial peptide of IL-6R can also be used as a sensitizing antigen.
  • the partial peptide can also be obtained by chemical synthesis from the amino acid sequence of human IL-6R.
  • the region and size of the IL-6R peptide used as a partial peptide are not particularly limited to a specific embodiment. As the preferred region, any sequence can be selected from amino acid sequences corresponding to amino acids 20-357 in the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the number of amino acids constituting the peptide to be sensitized antigen is preferably at least 5 or more, for example 6 or more, or 7 or more. More specifically, a peptide having 8 to 50, preferably 10 to 30 residues can be used as a sensitizing antigen.
  • a fusion protein obtained by fusing a desired partial polypeptide or peptide of IL-6R protein with a different polypeptide can be used as a sensitizing antigen.
  • an antibody Fc fragment or a peptide tag can be suitably used.
  • a vector that expresses a fusion protein can be prepared by fusing genes encoding two or more desired polypeptide fragments in-frame and inserting the fusion gene into the expression vector as described above. The method for producing the fusion protein is described in Molecular Cloning 2nd ed.
  • the mammal immunized with the sensitizing antigen is not limited to a specific animal, but is preferably selected in consideration of compatibility with the parent cell used for cell fusion.
  • rodent animals such as mice, rats, hamsters, rabbits, monkeys and the like are preferably used.
  • the above animals are immunized with a sensitizing antigen.
  • immunization is performed by administering a sensitizing antigen intraperitoneally or subcutaneously to a mammal. Specifically, after a sensitizing antigen diluted with PBS (Phosphate-Buffered Saline) or physiological saline at an appropriate dilution ratio is mixed with a normal adjuvant, for example, Freund's complete adjuvant, and emulsified, if desired.
  • a normal adjuvant for example, Freund's complete adjuvant
  • emulsified if desired.
  • the sensitizing antigen is administered to the mammal several times every 4 to 21 days.
  • an appropriate carrier can be used during immunization with the sensitizing antigen.
  • a partial peptide having a low molecular weight when used as a sensitizing antigen, it may be desirable to immunize the sensitizing antigen peptide bound to a carrier protein such as albumin or keyhole limpet hemocyanin.
  • a carrier protein such as albumin or keyhole limpet hemocyanin.
  • a hybridoma that produces a desired antibody can be prepared as follows using DNA immunization.
  • DNA immunization a sensitized antigen is expressed in vivo in the immunized animal to which the vector DNA constructed in such a manner that the gene encoding the antigen protein can be expressed in the immunized animal.
  • This is an immunization method in which immune stimulation is given.
  • the following advantages are expected in DNA immunization. -Maintains the structure of membrane proteins such as IL-6R and can provide immune stimulation-No need to purify immune antigens
  • DNA expressing IL-6R protein is administered to an immunized animal.
  • DNA encoding IL-6R can be synthesized by a known method such as PCR.
  • the obtained DNA is inserted into an appropriate expression vector and administered to an immunized animal.
  • the expression vector for example, a commercially available expression vector such as pcDNA3.1 can be suitably used.
  • a method for administering a vector to a living body a generally used method can be used.
  • DNA immunization is performed by introducing gold particles adsorbed with an expression vector into cells of an immunized animal with a gene gun.
  • an antibody recognizing IL-6R can also be produced using the method described in International Publication WO2003 / 104453.
  • immune cells are collected from the mammal and subjected to cell fusion. Spleen cells can be used as preferred immune cells.
  • Mammalian myeloma cells are used as the cells fused with the immune cells.
  • the myeloma cell is preferably provided with an appropriate selection marker for screening.
  • a selectable marker refers to a trait that can (or cannot) survive under certain culture conditions.
  • Known selection markers include hypoxanthine-guanine-phosphoribosyltransferase deficiency (hereinafter abbreviated as HGPRT deficiency) or thymidine kinase deficiency (hereinafter abbreviated as TK deficiency).
  • HGPRT deficiency hypoxanthine-guanine-phosphoribosyltransferase deficiency
  • TK deficiency thymidine kinase deficiency
  • Cells having HGPRT or TK deficiency have hypoxanthine-aminopterin-thymidine sensitivity (hereinafter abbreviated as HAT sensitivity).
  • HGPRT-deficient or TK-deficient cells can be selected in a medium containing 6 thioguanine, 8 azaguanine (hereinafter abbreviated as 8AG), or 5 'bromodeoxyuridine, respectively.
  • 8AG 8 azaguanine
  • 5 'bromodeoxyuridine normal cells that incorporate these pyrimidine analogs into DNA die.
  • cells deficient in these enzymes that cannot take up these pyrimidine analogs can survive in selective media.
  • G418 resistance confers resistance to 2-deoxystreptamine antibiotics (gentamicin analogs) by a neomycin resistance gene.
  • gentamicin analogs gentamicin analogs
  • myeloma cells suitable for cell fusion are known.
  • Examples of such myeloma cells include P3 (P3x63Ag8.653) (J. Immunol. (1979) 123 (4), 1548-1550), P3x63Ag8U.1 (Current Topics in Microbiology and Immunology (1978) 81, 1- 7), NS-1 (C. Eur. J. Immunol. (1976) 6 (7), 511-519), MPC-11 (Cell (1976) 8 (3), 405-415), SP2 / 0 ( Nature (1978) 276 (5685), 269-270), FO (J. Immunol. Methods (1980) 35 (1-2), 1-21), S194 / 5.XX0.BU.1 (J. Exp. Med. (1978) 148 (1), 313-323), R210 (Nature (1979) 277 (5692), 131-133) and the like can be suitably used.
  • P3x63Ag8.653 J. Immunol. (1979) 123 (4), 1548-1550
  • cell fusion between the immune cells and myeloma cells is performed according to a known method such as the method of Köhler and Milstein et al. (Methods Enzymol. (1981) 73, 3-46). More specifically, for example, the cell fusion can be performed in a normal nutrient culture medium in the presence of a cell fusion promoter.
  • a cell fusion promoter for example, polyethylene glycol (PEG), Sendai virus (HVJ) or the like is used, and an auxiliary agent such as dimethyl sulfoxide is optionally added to increase the fusion efficiency.
  • the usage ratio of immune cells and myeloma cells can be set arbitrarily.
  • the number of immune cells is preferably 1 to 10 times that of myeloma cells.
  • the culture medium used for the cell fusion for example, RPMI1640 culture medium suitable for the growth of the myeloma cell line, MEM culture medium, and other normal culture liquids used for this type of cell culture are used. Serum replacement fluid such as fetal serum (FCS) can be suitably added.
  • FCS fetal serum
  • a predetermined amount of the immune cells and myeloma cells are mixed well in the culture solution, and a PEG solution (for example, an average molecular weight of about 1000 to 6000) preheated to about 37 ° C. is usually 30 to 60%. It is added at a concentration of (w / v).
  • a desired fused cell is formed by gently mixing the mixture.
  • cell fusion agents and the like that are undesirable for the growth of hybridomas can be removed by repeating the operation of adding the appropriate culture solution listed above and removing the supernatant by centrifugation.
  • the hybridoma thus obtained can be selected by culturing in a normal selective culture solution, for example, a HAT culture solution (a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine).
  • a HAT culture solution a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine.
  • the culture using the HAT culture solution can be continued for a time sufficient for cells other than the desired hybridoma (non-fused cells) to die (usually, sufficient time is several days to several weeks).
  • screening and single cloning of hybridomas producing the desired antibody are performed by the usual limiting dilution method.
  • the hybridoma thus obtained can be selected by using a selective culture solution corresponding to the selection marker possessed by the myeloma used for cell fusion.
  • a selective culture solution corresponding to the selection marker possessed by the myeloma used for cell fusion.
  • cells having HGPRT or TK deficiency can be selected by culturing in a HAT culture solution (a culture solution containing hypoxanthine, aminopterin and thymidine). That is, when HAT-sensitive myeloma cells are used for cell fusion, cells that have succeeded in cell fusion with normal cells can selectively proliferate in the HAT medium.
  • the culture using the HAT culture solution is continued for a time sufficient for cells other than the desired hybridoma (non-fusion cells) to die.
  • a desired hybridoma can be selected by culturing for several days to several weeks. Subsequently, screening and single cloning of hybridomas producing the desired antibody can be performed by conventional limiting
  • Desired antibody screening and single cloning can be suitably performed by a screening method based on a known antigen-antibody reaction.
  • a monoclonal antibody that binds to IL-6R can bind to IL-6R expressed on the cell surface.
  • Such monoclonal antibodies can be screened, for example, by FACS (fluorescence activated cell sorting).
  • FACS fluorescence activated cell sorting
  • FACS is a system that makes it possible to measure the binding of an antibody to the cell surface by analyzing the cells brought into contact with the fluorescent antibody with laser light and measuring the fluorescence emitted by each individual cell.
  • cells expressing IL-6R are prepared.
  • Preferred cells for screening are mammalian cells in which IL-6R is forcibly expressed.
  • the binding activity of the antibody to cell surface IL-6R can be selectively detected. That is, a hybridoma that produces an IL-6R monoclonal antibody can be obtained by selecting a hybridoma that produces an antibody that does not bind to host cells but binds to IL-6R forced expression cells.
  • the binding activity of the antibody to the immobilized IL-6R-expressing cells can be evaluated based on the principle of ELISA.
  • IL-6R-expressing cells are immobilized in the well of an ELISA plate.
  • the culture supernatant of the hybridoma is brought into contact with the immobilized cells in the well, and an antibody that binds to the immobilized cells is detected.
  • the monoclonal antibody is derived from a mouse
  • the antibody bound to the cell can be detected by an anti-mouse immunoglobulin antibody.
  • a hybridoma that produces a desired antibody having an ability to bind to an antigen selected by these screenings can be cloned by a limiting dilution method or the like.
  • the hybridoma producing the monoclonal antibody thus produced can be subcultured in a normal culture solution.
  • the hybridoma can also be stored for a long time in liquid nitrogen.
  • the hybridoma is cultured according to a usual method, and a desired monoclonal antibody can be obtained from the culture supernatant.
  • a hybridoma can be administered to a mammal compatible therewith and allowed to proliferate, and a monoclonal antibody can be obtained from the ascites.
  • the former method is suitable for obtaining a highly pure antibody.
  • Recombinant antibody An antibody encoded by an antibody gene cloned from antibody-producing cells such as the hybridoma can also be suitably used.
  • An antibody encoded by the gene is expressed by incorporating the cloned antibody gene into a suitable vector and introducing it into a host. Methods for isolation of antibody genes, introduction into vectors, and transformation of host cells are already established, for example, by Vandamme et al. (Eur. J. Biochem. (1990) 192 (3), 767- 775). As described below, methods for producing recombinant antibodies are also known.
  • cDNA encoding a variable region (V region) of an anti-IL-6R antibody is obtained from a hybridoma cell that produces the anti-IL-6R antibody.
  • V region variable region
  • RNA is extracted from the hybridoma.
  • the following method can be used. -Guanidine ultracentrifugation (Biochemistry (1979) 18 (24), 5294-5299) -AGPC method (Anal. Biochem. (1987) 162 (1), 156-159)
  • Extracted mRNA can be purified using mRNA Purification Kit (manufactured by GE Healthcare Bioscience) or the like. Alternatively, kits for extracting total mRNA directly from cells such as QuickPrep mRNA Purificati on Kit (manufactured by GE Healthcare Bioscience) are also commercially available. Using such a kit, mRNA can be obtained from the hybridoma. CDNA encoding the antibody V region can be synthesized from the obtained mRNA using reverse transcriptase. cDNA can be synthesized by AMV Reverse Transcriptase First-strand cDNA Synthesis Kit (manufactured by Seikagaku Corporation).
  • SMART RACE cDNA amplification kit (Clontech) and 5'-RACE method using PCR (Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1988) 85 (23), 8998- 9002, Nucleic Acids Res. (1989) 17 (8), 2919-2932) can be used as appropriate.
  • appropriate restriction enzyme sites described later can be introduced at both ends of the cDNA.
  • the desired cDNA fragment is purified from the obtained PCR product and then ligated with vector DNA.
  • a desired recombinant vector can be prepared from Escherichia coli that has formed the colony. Then, whether or not the recombinant vector has the target cDNA base sequence is confirmed by a known method such as the dideoxynucleotide chain termination method.
  • cDNA is synthesized using RNA extracted from a hybridoma cell as a template, and a 5'-RACE cDNA library is obtained.
  • a commercially available kit such as SMART RACE cDNA amplification kit is appropriately used for the synthesis of the 5'-RACE cDNA library.
  • the antibody gene is amplified by PCR using the obtained 5'-RACE cDNA library as a template.
  • Primers for amplifying mouse antibody genes can be designed based on known antibody gene sequences. These primers have different nucleotide sequences for each immunoglobulin subclass. Therefore, the subclass is preferably determined in advance using a commercially available kit such as the Iso Strip mouse monoclonal antibody isotyping kit (Roche Diagnostics).
  • primers capable of amplifying genes encoding ⁇ 1, ⁇ 2a, ⁇ 2b, ⁇ 3 as heavy chains and ⁇ chain and ⁇ chain as light chains are provided. Can be used.
  • a primer that anneals to a portion corresponding to a constant region close to the variable region is generally used as the 3 ′ primer.
  • the primer attached to the 5 'RACE cDNA library preparation kit is used as the 5'-side primer.
  • an immunoglobulin comprising a combination of a heavy chain and a light chain
  • Desired antibodies can be screened using the reconstituted immunoglobulin binding activity to IL-6R as an index.
  • the binding of the antibody to IL-6R is more preferably specific.
  • Antibodies that bind to IL-6R can be screened, for example, as follows; (1) contacting an antibody containing a V region encoded by cDNA obtained from a hybridoma with IL-6R-expressing cells; (2) a step of detecting binding between an IL-6R-expressing cell and an antibody, and (3) a step of selecting an antibody that binds to the IL-6R-expressing cell.
  • a method for detecting the binding between an antibody and IL-6R-expressing cells is known. Specifically, the binding between the antibody and the IL-6R-expressing cell can be detected by a technique such as FACS described above. In order to evaluate the binding activity of the antibody, a fixed specimen of IL-6R-expressing cells can be appropriately used.
  • a panning method using a phage vector is also preferably used as an antibody screening method using binding activity as an index.
  • an antibody gene is obtained from a polyclonal antibody-expressing cell group as a heavy chain and light chain subclass library, a screening method using a phage vector is advantageous.
  • the gene encoding the variable region of the heavy chain and light chain can form a single chain Fv (scFv) by linking with an appropriate linker sequence (Nat. Biotechnol. (2005) 23 (9), 1126- 1136).
  • a gene encoding scFv into a phage vector, a phage expressing scFv on the surface can be obtained.
  • the phage encoding the antigen can be recovered to recover the DNA encoding scFv having the desired binding activity. By repeating this operation as necessary, scFv having a desired binding activity can be concentrated.
  • the cDNA is digested with a restriction enzyme that recognizes restriction enzyme sites inserted at both ends of the cDNA.
  • a preferred restriction enzyme recognizes and digests a base sequence that appears infrequently in the base sequence constituting the antibody gene.
  • An antibody expression vector can be obtained by inserting the cDNA encoding the V region of the anti-IL-6R antibody digested as described above into an appropriate expression vector.
  • a chimeric antibody is obtained.
  • the chimeric antibody means that the origin of the constant region and the variable region are different.
  • a heterologous chimeric antibody such as mouse-human
  • a human-human homologous chimeric antibody is also included in the chimeric antibody of the present invention.
  • a chimeric antibody expression vector can be constructed by inserting the V region gene into an expression vector having a constant region in advance.
  • a restriction enzyme recognition sequence for a restriction enzyme that digests the V region gene can be appropriately arranged on the 5 ′ side of an expression vector holding a DNA encoding a desired antibody constant region (C region).
  • a chimeric antibody expression vector is constructed by fusing both digested with the same combination of restriction enzymes in-frame.
  • the antibody gene is incorporated into an expression vector so that it is expressed under the control of the expression control region.
  • An expression control region for expressing an antibody includes, for example, an enhancer and a promoter.
  • An appropriate signal sequence can also be added to the amino terminus so that the expressed antibody is secreted extracellularly.
  • a peptide having the amino acid sequence MGWSCIILFLVATATGVHS (SEQ ID NO: 3) is used as the signal sequence, but other suitable signal sequences are added.
  • the expressed polypeptide can be cleaved at the carboxyl terminal portion of the sequence, and the cleaved polypeptide can be secreted extracellularly as a mature polypeptide.
  • an appropriate host cell is transformed with this expression vector, whereby a recombinant cell expressing a DNA encoding an anti-IL-6R antibody can be obtained.
  • DNAs encoding antibody heavy chains (H chains) and light chains (L chains) are incorporated into separate expression vectors.
  • An antibody molecule having an H chain and an L chain can be expressed by co-transfecting the same host cell with a vector in which the H chain and the L chain are incorporated.
  • host cells can be transformed by incorporating DNAs encoding H and L chains into a single expression vector (see International Publication WO 1994/011523).
  • host cells and expression vectors for producing antibodies by introducing an isolated antibody gene into a suitable host are known. Any of these expression systems can be applied to isolate the antigen binding domain of the present invention.
  • animal cells, plant cells, or fungal cells can be used as appropriate. Specifically, the following cells can be exemplified as animal cells.
  • Mammalian cells CHO, COS, myeloma, BHK (baby hamster kidney), Hela, Vero, HEK (human embryonic kidney) 293, etc.
  • Amphibian cells Xenopus oocytes, etc.
  • Insect cells sf9, sf21, Tn5, etc.
  • Nicotiana such as Nicotiana tabacum
  • Callus cultured cells can be used as appropriate for transformation of plant cells.
  • -Yeast Saccharomyces genus such as Saccharomyces serevisiae, Pichia genus such as methanol-utilizing yeast (Pichia pastor is)-Filamentous fungi: Aspergillus genus such as Aspergillus niger (Aspergillus niger)
  • antibody gene expression systems using prokaryotic cells are also known.
  • bacterial cells such as E. coli and Bacillus subtilis can be used as appropriate.
  • An expression vector containing the target antibody gene is introduced into these cells by transformation. By culturing the transformed cells in vitro, a desired antibody can be obtained from the culture of the transformed cells.
  • transgenic animals can also be used for the production of recombinant antibodies. That is, the antibody can be obtained from an animal into which a gene encoding a desired antibody has been introduced.
  • an antibody gene can be constructed as a fusion gene by inserting it in-frame into a gene encoding a protein that is uniquely produced in milk.
  • a protein secreted in milk for example, goat ⁇ casein can be used.
  • the DNA fragment containing the fusion gene into which the antibody gene has been inserted is injected into a goat embryo, and the injected embryo is introduced into a female goat.
  • the desired antibody can be obtained as a fusion protein with milk protein from milk produced by a transgenic goat (or its progeny) born from a goat that has received the embryo.
  • hormones can be administered to transgenic goats to increase the amount of milk containing the desired antibody produced from the transgenic goats (Bio / Technology (1994), 12 (7), 699-702). .
  • Humanized antibody human antibody
  • the antigen-binding molecule described herein When the antigen-binding molecule described herein is administered to humans, it is artificially used as an antigen-binding domain in the antigen-binding molecule for the purpose of reducing heterogeneity against humans.
  • An antigen-binding domain derived from a modified recombinant antibody can be appropriately employed.
  • the gene recombinant antibody includes, for example, a humanized antibody in addition to the above-described chimeric antibody. These modified antibodies are appropriately produced using known methods.
  • variable region of an antibody used to generate an antigen binding domain in an antigen binding molecule typically consists of three complementarity determining regions (4) sandwiched between 4 framework regions (FR).
  • Complementarity-determining region (CDR) are regions that substantially determine the binding specificity of an antibody.
  • the amino acid sequence of CDR is rich in diversity.
  • the amino acid sequences constituting FR often show high identity even among antibodies having different binding specificities. Therefore, it is generally said that the binding specificity of a certain antibody can be transplanted to another antibody by CDR grafting.
  • Humanized antibodies are also referred to as reshaped human antibodies.
  • non-human animals for example, humanized antibodies obtained by grafting mouse antibody CDRs to human antibodies are known.
  • General genetic recombination techniques for obtaining humanized antibodies are also known.
  • Overlap Extension PCR is known as a method for transplanting a mouse antibody CDR into a human FR.
  • Overlap Extension PCR a base sequence encoding the CDR of a mouse antibody to be transplanted is added to a primer for synthesizing a human antibody FR. Primers are prepared for each of the four FRs.
  • a human FR comprising an amino acid sequence having high identity with the FR amino acid sequence adjacent to the mouse CDR to be transplanted.
  • the base sequences to be linked are designed to be connected to each other in frame.
  • Human FRs are synthesized individually by each primer.
  • a product in which DNA encoding mouse CDR is added to each FR is obtained.
  • the base sequences encoding mouse CDRs of each product are designed to overlap each other.
  • the overlapping CDR portions of the products synthesized using the human antibody gene as a template are annealed with each other to perform a complementary chain synthesis reaction. By this reaction, human FRs are linked via the mouse CDR sequence.
  • a human-type antibody expression vector can be prepared by inserting the DNA obtained as described above and a DNA encoding the human antibody C region into an expression vector so as to be fused in frame. After introducing the integration vector into a host and establishing a recombinant cell, the recombinant cell is cultured, and a DNA encoding the humanized antibody is expressed, whereby the humanized antibody becomes a culture of the cultured cell. (See European Patent Publication EP239400, International Publication WO1996 / 002576).
  • the CDR forms a favorable antigen-binding site when linked via CDR.
  • a human antibody FR can be suitably selected.
  • FR amino acid residues can be substituted so that the CDR of the reshaped human antibody forms an appropriate antigen-binding site.
  • amino acid sequence mutations can be introduced into FRs by applying the PCR method used for transplantation of mouse CDRs into human FRs.
  • partial nucleotide sequence mutations can be introduced into primers that anneal to the FR.
  • a nucleotide sequence mutation is introduced into the FR synthesized by such a primer.
  • a mutant FR sequence having a desired property can be selected by measuring and evaluating the antigen-binding activity of a mutant antibody substituted with an amino acid by the above method (Cancer Res., (1993) 53, 851-856). .
  • transgenic animals having all repertoires of human antibody genes are used as immunized animals, and DNA immunization is performed. Desired human antibodies can be obtained.
  • the V region of a human antibody is expressed as a single chain antibody (scFv) on the surface of the phage by the phage display method.
  • Phages expressing scFv that bind to the antigen can be selected.
  • the DNA sequence encoding the V region of the human antibody that binds to the antigen can be determined.
  • the V region sequence is fused in-frame with the sequence of the desired human antibody C region, and then inserted into an appropriate expression vector, whereby an expression vector can be prepared.
  • the human antibody is obtained by introducing the expression vector into a suitable expression cell as described above and expressing the gene encoding the human antibody.
  • These methods are already known (see International Publications WO1992 / 001047, WO1992 / 020791, WO1993 / 006213, WO1993 / 011236, WO1993 / 019172, WO1995 / 001438, WO1995 / 015388).
  • the amino acid positions assigned to CDRs and FRs of antibodies are defined according to Kabat (Sequences of Proteins of Immunological Interest (National Institute of Health, Bethesda, Md. , 1987 and 1991.
  • Kabat Sequences of Proteins of Immunological Interest
  • the amino acids in the variable region are in accordance with Kabat numbering
  • the amino acids in the constant region are EU numbering according to the amino acid position of Kabat. It is expressed according to
  • FcRn Unlike the Fc ⁇ receptor, which belongs to the immunoglobulin superfamily, human FcRn is structurally similar to a major tissue incompatibility complex (MHC) class I polypeptide, and has a class I MHC molecule and 22-29% sequence. Have identity (Ghetie et al., Immunol. Today (1997) 18 (12), 592-598). FcRn is expressed as a heterodimer consisting of a transmembrane ⁇ or heavy chain complexed with a soluble ⁇ or light chain ( ⁇ 2 microglobulin).
  • MHC tissue incompatibility complex
  • the ⁇ chain of FcRn consists of three extracellular domains ( ⁇ 1, ⁇ 2, ⁇ 3), and the short cytoplasmic domain tethers the protein to the cell surface.
  • the ⁇ 1 and ⁇ 2 domains interact with the FcRn binding domain in the Fc region of antibodies (Raghavan et al. (Immunity (1994) 1, 303-315).
  • FcRn is expressed in the maternal placenta or yolk sac of mammals, which is involved in the transfer of IgG from the mother to the fetus. In addition, in the small intestine of rodent neonates that express FcRn, it is involved in the movement of maternal IgG across the brush border epithelium from colostrum or milk ingested FcRn. FcRn is expressed in many other tissues as well as various endothelial cell lines across many species. It is also expressed on human adult vascular endothelium, muscle vasculature, and liver sinusoidal capillaries. FcRn is thought to play a role in maintaining the plasma concentration of IgG by binding to IgG and recycling it to serum. The binding of FcRn to IgG molecules is usually strictly pH dependent, with optimal binding observed in the acidic pH range below 7.0.
  • Human FcRn having a polypeptide containing a signal sequence represented by SEQ ID NO: 4 (FcRn; NP_004098.1) as a precursor is a signal sequence in vivo (SEQ ID NO: 5 (beta2-microglobulin; NP_004039.1)). Which forms a complex with human ⁇ 2-microglobulin).
  • soluble human FcRn forming a complex with ⁇ 2-microglobulin is produced by using ordinary recombinant expression techniques. The binding activity of the Fc region of the present invention to soluble human FcRn forming a complex with such ⁇ 2-microglobulin can be evaluated.
  • human FcRn refers to a form that can bind to the Fc region of the present invention, and examples include a complex of human FcRn and human ⁇ 2-microglobulin.
  • the antigen-binding molecule of the present invention has an FcRn binding domain.
  • the FcRn-binding domain is not particularly limited as long as the antigen-binding molecule has binding activity to FcRn in the acidic pH range, and may be a domain having binding activity to FcRn directly or indirectly.
  • Examples of such domains include, for example, Fc region of IgG type immunoglobulin having direct binding activity to FcRn, albumin, albumin domain 3, anti-FcRn antibody, anti-FcRn peptide, anti-FcRn scaffold (Scaffold) molecule, etc.
  • Preferred examples include molecules that indirectly bind to FcRn and bind to IgG and albumin.
  • a domain having binding activity for FcRn in the acidic pH range and neutral pH range is preferred.
  • the domain can be preferably used as it is as long as it has a binding activity to FcRn in the acidic pH range in advance.
  • the amino acid in the antigen-binding molecule can be modified to impart binding activity to FcRn.
  • FcRn binding activity may be increased by modifying amino acids in the domain having binding activity to FcRn in the acidic pH range in advance. The modification of the amino acid of the FcRn binding domain can be found by comparing the binding activity to FcRn in the acidic pH range before and after the amino acid modification.
  • the FcRn binding domain is preferably a region that directly binds to FcRn.
  • Preferred examples of the FcRn binding domain include an antibody Fc region.
  • a region capable of binding to a polypeptide having binding activity to FcRn such as albumin or IgG can be indirectly bound to FcRn via albumin or IgG. Therefore, as the FcRn binding region in the present invention, a region that binds to a polypeptide having binding activity with FcRn can be preferably used.
  • the Fc region contains an amino acid sequence derived from the constant region of the antibody heavy chain.
  • the Fc region is a part of the heavy chain constant region of the antibody including the hinge, CH2 and CH3 domains from the N-terminus of the hinge region of the papain cleavage site at approximately 216 amino acids represented by EU numbering.
  • the binding activity of the FcRn-binding domain in the present invention to FcRn, particularly human FcRn can be measured by a method known to those skilled in the art as described in the above-mentioned binding activity section. Those skilled in the art can appropriately determine.
  • Antigen binding activity and human FcRn binding activity of an antigen binding molecule are KD (Dissociation constant), apparent KD (Apparent dissociation constant), kd (Dissociation rate), which is a dissociation rate, Alternatively, it can be evaluated as apparent kd (Apparent dissociation).
  • KD Dissociation constant
  • apparent KD Apparent dissociation constant
  • kd Dissociation rate
  • Biacore GE healthcare
  • Scatchard plot flow cytometer, etc.
  • Conditions other than pH at the time of measuring the binding activity of the FcRn binding domain to FcRn can be appropriately selected by those skilled in the art, and are not particularly limited. For example, it can be measured under conditions of MES buffer and 37 ° C. as described in WO2009 / 125825. Further, the FcRn-binding domain of the present invention can be measured for the binding activity to FcRn by a method known to those skilled in the art, for example, using Biacore (GE Healthcare). The FcRn binding domain and FcRn binding activity can be measured by measuring the FcRn binding domain or FcRn binding domain containing the FcRn binding domain or the FcRn binding chip. Of antigen-binding molecules can be evaluated as analytes.
  • the pH acidic range as a condition having the binding activity between the FcRn binding domain and FcRn contained in the antigen-binding molecule of the present invention usually means pH 4.0 to pH 6.5. Preferably, it means pH 5.5 to pH 6.5, and particularly preferably means pH 5.8 to pH 6.0 which is close to the pH in the early endosome in vivo.
  • the temperature used for the measurement conditions the binding affinity between the FcRn binding domain and FcRn may be evaluated at an arbitrary temperature of 10 ° C. to 50 ° C. Preferably, a temperature of 15 ° C. to 40 ° C. is used to determine the binding affinity between the FcRn binding domain and human FcRn. More preferably from 20 ° C.
  • 35 ° C. such as any one of 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, and 35 ° C. Is also used to determine the binding affinity between the FcRn binding domain and FcRn.
  • a temperature of 25 ° C. is a non-limiting example of an embodiment of the present invention.
  • the binding activity of natural human IgG1 to human FcRn is KD 1.7 ⁇ M in the acidic pH range (pH 6.0), but pH neutral. In the region, almost no activity was detected. Therefore, in a preferred embodiment, the binding activity to human FcRn is 20 ⁇ M or more KD under acidic pH conditions and the binding activity to human FcRn is equivalent to that of natural human IgG under neutral pH conditions.
  • the antigen-binding molecule of the present invention that has a binding activity to human FcRn under acidic pH conditions can be used.
  • the antigen-binding molecule of the present invention containing an antigen-binding molecule having a human FcRn-binding activity of KD 2.0 ⁇ M or stronger under acidic pH conditions can be used.
  • an antigen-binding molecule having a human FcRn binding activity of KD 0.5 ⁇ M or stronger under conditions in the acidic pH range can be used.
  • the above KD value is determined by the method described in The Journal of Immunology (2009) 182: 7663-7671 (an antigen-binding molecule is immobilized on a chip and human FcRn is flowed as an analyte).
  • an Fc region having an activity of binding to FcRn under acidic pH conditions is preferable.
  • the domain can be used as it is as long as it is an Fc region having an activity of binding to FcRn in advance under acidic pH conditions. If the domain has no or weak binding activity to FcRn under acidic pH conditions, an Fc region having the desired binding activity to FcRn can be obtained by modifying the amino acid in the antigen-binding molecule. An Fc region having or enhanced binding activity to a desired FcRn under the acidic pH condition can be suitably obtained by modifying an amino acid in the region.
  • the Fc region having binding activity to FcRn under the acidic pH condition contained in the antigen-binding molecule of the present invention can be obtained by any method.
  • human IgG-type immunoglobulin used as the starting Fc region By modifying these amino acids, an FcRn-binding domain having or enhanced binding activity to FcRn under acidic pH conditions can be obtained.
  • Preferred Fc regions of IgG type immunoglobulin for modification include, for example, Fc regions of human IgG (IgG1, IgG2, IgG3, or IgG4, and variants thereof).
  • the amino acid at any position can be modified as long as it has binding activity to FcRn under acidic pH conditions, or can enhance binding activity to human FcRn under acidic conditions. If the antigen-binding molecule contains the Fc region of human IgG1 as the Fc region, modifications that have the effect of enhancing the binding to FcRn over the binding activity of the starting Fc region of human IgG1 under conditions of acidic pH It is preferable.
  • amino acids that can be modified, for example, as described in WO2000 / 042072, 238, 252, 253, 254, 255, 256, 265, 265, 272 represented by EU numbering , 286, 288, 303, 305, 307, 309, 311, 312, 317, 340, 356, 360, 362, 376, 378, 380, 380, Preferable examples include amino acids at positions 382, 386, 388, 400, 413, 415, 424, 433, 434, 435, 436, 439 and / or 447.
  • amino acids that can be modified as described above for example, as described in WO2002 / 060919, positions 251, 252, 254, 255, 255, 256, 308, 309, represented by EU numbering Preferred examples also include amino acids at position 3, 311, 312, 385, 386, 387, 389, 428, 433, 434 and / or 436.
  • amino acids at positions 250, 314, and 428 represented by EU numbering can also be mentioned as amino acids capable of such modification.
  • amino acids capable of such modification are represented by EU numbering, such as positions 251, 252, 307, 308, 378, 428, 430. Amino acids at positions 434 and / or 436 are also preferred. By modification of these amino acids, the binding to FcRn is enhanced under the acidic pH range of the Fc region of IgG type immunoglobulin.
  • amino acid modification to be introduced is not particularly limited. Any amino acid modification may be introduced as long as the effect of improving plasma retention is brought about.
  • an antigen-binding domain having binding activity to FcRn can be used as appropriate as the FcRn-binding domain.
  • a bispecific antibody can be used as appropriate as an antigen-binding molecule of the present invention, but one epitope to which the bispecific antibody binds is an epitope present in a desired antigen other than FcRn.
  • Preferred examples include bispecific antibodies in which the other epitope is an epitope present in FcRn.
  • the structure of the bispecific antibody is not limited to a specific structure as long as it includes a bivalent binding domain having a binding valence to a desired antigen and FcRn and a sugar chain receptor binding domain.
  • an antibody structure such as an IgG type antibody linked with an Fc region can be used, and “scFv2 (single chain Fv 2)”, “diabody”, “F (ab ′) 2”, etc. are also suitable.
  • the sugar chain binding domain may be included in the Fc region, and may also be included in the FcRn binding domain and / or the antigen binding domain.
  • the sugar chain binding domain is an FcRn binding domain and / or an antigen binding domain.
  • an FcRn binding domain whose binding to FcRn varies depending on the ion concentration conditions as described later in the section “Ion concentration conditions” is appropriately used as the FcRn binding domain.
  • the FcRn-binding domain binds to FcRn depending on the metal ion concentration conditions and pH conditions. Changing FcRn binding domains can be used.
  • the ion concentration refers to the metal ion concentration.
  • Metal ion means group I such as alkali metal and copper group excluding hydrogen, group II such as alkaline earth metal and zinc group, group III excluding boron, group IV excluding carbon and silicon, It refers to ions of elements belonging to Group A, Group VIII, Group V, Group VI and Group VII, such as Iron and Platinum, and metal elements such as antimony, bismuth and polonium. Metal atoms have the property of releasing valence electrons and becoming cations, which is called ionization tendency. A metal having a large ionization tendency is considered to be chemically active.
  • An example of a metal ion suitable for the present invention is calcium ion.
  • Calcium ions are involved in the regulation of many life phenomena, such as contraction of muscles such as skeletal muscle, smooth muscle and myocardium, activation of leukocyte movement and phagocytosis, activation of platelet deformation and secretion, lymphocytes, etc. , Activation of mast cells such as histamine secretion, cellular response via catecholamine alpha receptor and acetylcholine receptor, exocytosis, release of transmitter from neuronal terminals, neuronal axon flow, etc. Ions are involved.
  • intracellular calcium ion receptors are troponin C, calmodulin, parvalbumin, myosin light chain, etc., which have multiple calcium ion binding sites and are thought to be derived from a common origin in molecular evolution. Many of its binding motifs are also known. For example, cadherin domain, EF hand contained in calmodulin, C2 domain contained in protein kinase C, Gla domain contained in blood coagulation protein FactorIX, C-type lectin contained in asialoglycoprotein receptor and mannose receptor, contained in LDL receptor A domain, annexin, thrombospondin type 3 domain and EGF-like domain are well known.
  • the calcium ion concentration condition when the metal ion is calcium ion, the calcium ion concentration condition includes a low calcium ion concentration condition and a high calcium ion concentration condition.
  • the binding activity changes depending on the calcium ion concentration condition means that the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen changes depending on the difference between the low calcium ion concentration and the high calcium ion concentration.
  • the binding activity of an antigen-binding molecule to an antigen under a high calcium ion concentration condition is higher than the binding activity of the antigen-binding molecule to an antigen under low calcium ion concentration conditions.
  • the high calcium ion concentration is not particularly limited to a unique numerical value, but may preferably be a concentration selected from 100 ⁇ M to 10 mM. In another embodiment, the concentration may be selected from 200 ⁇ M to 5 mM. In another embodiment, the concentration may be selected from 500 ⁇ M to 2.5 mM, and in another embodiment, the concentration may be selected from 200 ⁇ M to 2 mM. Further, the concentration may be selected from 400 ⁇ M to 1.5 mM. Particularly preferred is a concentration selected from 500 ⁇ M to 2.5 mM close to the calcium ion concentration in plasma (blood) in vivo.
  • the low calcium ion concentration is not particularly limited to a unique numerical value, but may preferably be a concentration selected from 0.1 ⁇ M to 30 ⁇ M. In another embodiment, it may also be a concentration selected from between 0.2 ⁇ M and 20 ⁇ M. In another embodiment, the concentration may be selected from 0.5 ⁇ M to 10 ⁇ M, and in another embodiment, the concentration may be selected from 1 ⁇ M to 5 ⁇ M. It can also be a concentration selected between 2 ⁇ M and 4 ⁇ M. Particularly preferred is a concentration selected from 1 ⁇ M to 5 ⁇ M close to the ionized calcium concentration in the early endosome in vivo.
  • the binding activity to the antigen under the condition of low calcium ion concentration is lower than the binding activity to the antigen under the condition of high calcium ion concentration is a calcium ion concentration selected from 0.1 ⁇ M to 30 ⁇ M of the antigen binding molecule.
  • the binding activity to the antigen is weaker than the binding activity to the antigen at a calcium ion concentration selected from 100 ⁇ M to 10 mM.
  • the antigen binding activity of the antigen binding molecule at a calcium ion concentration selected between 0.5 ⁇ M and 10 ⁇ M is weaker than the antigen binding activity at a calcium ion concentration selected between 200 ⁇ M and 5 mM.
  • the antigen binding activity at the calcium ion concentration in the early endosome in the living body is weaker than the antigen binding activity at the calcium ion concentration in the plasma in the living body, specifically, the antigen
  • the binding activity of the binding molecule to the antigen at a calcium ion concentration selected from 1 ⁇ M to 5 ⁇ M is weaker than the binding activity to the antigen at a calcium ion concentration selected from 500 ⁇ M to 2.5 mM.
  • the binding activity of the antigen-binding domain of the present invention to the antigen is changed depending on the condition of the metal ion concentration is determined by using, for example, a known measurement method as described in the above-mentioned section of binding activity. obtain.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule containing the antigen-binding domain of the present invention under the condition of low calcium ion concentration to the antigen of the antigen-binding molecule containing the antigen-binding domain under the condition of higher calcium ion concentration than that of the antigen-binding molecule is compared.
  • the expression “the binding activity to the antigen under the condition of low calcium ion concentration is lower than the binding activity to the antigen under the condition of high calcium ion concentration” means that the antigen binding molecule binds to the antigen under the high calcium ion concentration condition. It can also be expressed that the activity is higher than the binding activity to the antigen under low calcium ion concentration conditions.
  • “the binding activity to the antigen under the condition of low calcium ion concentration is lower than the binding activity to the antigen under the condition of high calcium ion concentration” is referred to as “the antigen binding ability under the low calcium ion concentration condition is high calcium ion concentration”.
  • Conditions other than the calcium ion concentration at the time of measuring the binding activity to the antigen can be appropriately selected by those skilled in the art and are not particularly limited.
  • measurement can be performed under the conditions of HEPES buffer and 37 ° C.
  • Biacore GE Healthcare
  • the antigen-binding molecule containing the antigen-binding domain is flowed as an analyte to the chip on which the antigen is immobilized. Thus, it is possible to evaluate the binding activity to the membrane antigen.
  • the binding activity to the antigen under the condition of low calcium ion concentration is weaker than the binding activity to the antigen under the condition of high calcium ion concentration
  • the ratio of the binding activity to the antigen under the condition of ion concentration is not particularly limited, but preferably the ratio of KD (dissociation constant) under the condition of low calcium ion concentration to the antigen and KD under the condition of high calcium ion concentration
  • the value of (Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 2 mM) is 2 or more, more preferably the value of KD (Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 2 mM) is 10 or more, more preferably KD (Ca 3 ⁇ M).
  • the value of / KD (Ca 2 mM) is 40 or more.
  • the upper limit of the value of KD (Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 2 mM) is not particularly limited, and may be any value such as 400, 1000, 10000, etc. as long as it can be produced by a person skilled in the art. It can also be specified by the value of KD (Ca3 ⁇ M) / KD (Ca 1.2 mM).
  • the value of KD (Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 1.2 mM) is 2 or more, more preferably the value of KD (Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 1.2 mM) is 10 or more, more preferably KD (
  • the value of Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 1.2 mM) is 40 or more.
  • the upper limit of the value of KD (Ca 3 ⁇ M) / KD (Ca 1.2 mM) is not particularly limited, and may be any value such as 400, 1000, 10000, etc. as long as it can be produced by a person skilled in the art.
  • KD dissociation constant
  • apparent dissociation constant apparent dissociation constant
  • Biacore GE healthcare
  • Scatchard plot flow cytometer, etc. It is possible to use.
  • kd Dissociation rate which is a dissociation rate constant constant: dissociation rate constant
  • kd dissociation rate constant
  • KD dissociation constant
  • the ratio of kd (low calcium concentration condition) / kd (high calcium concentration condition), which is the ratio of rate constants, is preferably 2 or more, more preferably 5 or more, and even more preferably 10 or more. More preferably, it is 30 or more.
  • the upper limit of the value of Kd (conditions for low calcium concentration) / kd (conditions for high calcium concentration) is not particularly limited, and may be any value such as 50, 100, 200, etc. as long as it can be produced by the common general knowledge of those skilled in the art.
  • kd dissociation rate constant
  • apparent kd apparent dissociation rate constant
  • Biacore GE healthcare
  • a flow cytometer a flow cytometer
  • an antigen-binding domain or antibody whose binding activity to an antigen under conditions of low calcium ion concentration is lower than the binding activity to antigen under conditions of high calcium ion concentration is the following step (a )
  • To (c) can be obtained by screening an antigen-binding domain or antibody.
  • an antigen-binding domain or antibody that has an activity of binding to an antigen under conditions of low calcium ion concentration which is one aspect provided by the present invention, lower than that of antigen under conditions of high calcium ion concentration is the following step (a )
  • To (c) can be obtained by screening antigen binding domains or antibodies or libraries thereof.
  • (a) contacting an antigen-binding domain or antibody or a library thereof in a high calcium concentration condition with an antigen;
  • an antigen-binding domain or antibody that has a lower binding activity to an antigen under conditions of a low calcium ion concentration which is one embodiment provided by the present invention, is lower than the binding activity to an antigen under a condition of a high calcium ion concentration is the following step (a )
  • To (d) can be obtained by screening antigen binding domains or antibodies or libraries thereof.
  • step (a) contacting an antigen binding domain or antibody library with an antigen under low calcium concentration conditions; (b) selecting an antigen-binding domain or antibody that does not bind to the antigen in step (a), (c) binding the antigen-binding domain or antibody selected in step (b) to an antigen under high calcium concentration conditions; and (d) A step of isolating the antigen binding domain or antibody bound to the antigen in the step (c).
  • an antigen-binding domain or antibody that has an activity of binding to an antigen under conditions of low calcium ion concentration which is one aspect provided by the present invention, lower than that of antigen under conditions of high calcium ion concentration is the following step (a ) To (c). (a) contacting an antigen-binding domain or antibody library with a column immobilized with an antigen under high calcium concentration conditions; (b) eluting the antigen-binding domain or antibody bound to the column in step (a) from the column under low calcium concentration conditions; and (c) A step of isolating the antigen-binding domain or antibody eluted in the step (b).
  • an antigen-binding domain or antibody that has an activity of binding to an antigen under conditions of low calcium ion concentration which is one aspect provided by the present invention, lower than that of antigen under conditions of high calcium ion concentration is the following step (a ) To (d). (a) passing an antigen-binding domain or antibody library through a column immobilized with an antigen under low calcium concentration conditions; (b) recovering the antigen-binding domain or antibody eluted without binding to the column in the step (a), (c) binding the antigen-binding domain or antibody recovered in step (b) to an antigen under high calcium concentration conditions; and (d) A step of isolating the antigen binding domain or antibody bound to the antigen in the step (c).
  • an antigen-binding domain or antibody that has an activity of binding to an antigen under conditions of low calcium ion concentration which is one aspect provided by the present invention, lower than that of antigen under conditions of high calcium ion concentration is the following step (a ) To (d). (a) contacting the antigen-binding domain or library of antibodies with the antigen under high calcium concentration conditions; (b) obtaining an antigen-binding domain or antibody bound to the antigen in the step (a), (c) placing the antigen-binding domain or antibody obtained in step (b) under low calcium concentration conditions; and (d) isolating an antigen-binding domain or antibody having an antigen-binding activity that is weaker than the criterion selected in the step (b) in the step (c).
  • the above process may be repeated twice or more. Therefore, according to the present invention, in the above-described screening method, the condition of low calcium ion concentration obtained by the screening method further comprising the step of repeating the steps (a) to (c) or (a) to (d) twice or more.
  • An antigen-binding domain or antibody is provided which has a lower binding activity to the antigen in the antigen than binding activity to the antigen under conditions of high calcium ion concentration.
  • the number of times the steps (a) to (c) or (a) to (d) are repeated is not particularly limited, but is usually within 10 times.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding domain or antibody under low calcium concentration conditions is not particularly limited as long as the ion-binding calcium concentration is between 0.1 ⁇ M and 30 ⁇ M.
  • an antigen-binding activity between 0.5 ⁇ M and 10 ⁇ M can be mentioned.
  • a more preferable ionized calcium concentration includes an ionized calcium concentration in an early endosome in a living body, and specifically includes an antigen binding activity at 1 ⁇ M to 5 ⁇ M.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding domain or antibody under high calcium concentration conditions is not particularly limited as long as the ion-binding calcium concentration is between 100 ⁇ M and 10 mM, but a preferable ionized calcium concentration is 200 ⁇ M to 5 mM.
  • Antigen-binding activity between More preferable ionized calcium concentration includes ionized calcium concentration in plasma in a living body, specifically, antigen binding activity at 0.5 mM to 2.5 mM.
  • the antigen-binding activity of an antigen-binding domain or antibody can be measured by methods known to those skilled in the art, and conditions other than the ionized calcium concentration can be appropriately determined by those skilled in the art.
  • the antigen-binding activity of an antigen-binding domain or antibody is KD (Dissociation constant), apparent KD (Apparent dissociation constant), dissociation rate kd (Dissociation rate: dissociation rate constant), or apparent Kd (Apparent dissociation: apparent dissociation rate constant). These can be measured by methods known to those skilled in the art. For example, Biacore (GE healthcare), Scatchard plot, FACS and the like can be used.
  • the step of selecting an antigen-binding domain or antibody whose antigen-binding activity under a high calcium concentration condition is higher than that under a low calcium concentration condition is that the antigen-binding activity under a low calcium concentration condition is high This is the same meaning as the step of selecting an antigen-binding domain or antibody lower than the antigen-binding activity below.
  • the difference between the antigen binding activity under the high calcium concentration condition and the antigen binding activity under the low calcium concentration condition is not particularly limited,
  • the antigen binding activity under a high calcium concentration condition is 2 times or more of the antigen binding activity under a low calcium concentration condition, more preferably 10 times or more, and more preferably 40 times or more.
  • the antigen-binding domain or antibody of the present invention to be screened by the above screening method may be any antigen-binding domain or antibody.
  • the above-described antigen-binding domain or antibody can be screened.
  • an antigen binding domain or antibody having a natural sequence may be screened, or an antigen binding domain or antibody having an amino acid sequence substituted may be screened.
  • the antigen-binding domain or antibody of the present invention to be screened by the above screening method may be prepared in any way, for example, metal When the ion is at a calcium ion concentration, it was prepared from pre-existing antibodies, pre-existing libraries (such as phage libraries), hybridomas obtained from immunization to animals, and B cells from immunized animals Antibodies or libraries, amino acids capable of chelating calcium to these antibodies or libraries (for example, aspartic acid or glutamic acid), or antibodies or libraries introduced with unnatural amino acid mutations (amino acids capable of chelating calcium (for example, aspartic acid or glutamic acid) or It is possible to use a library in which the content of unnatural amino acid is increased, an amino acid capable of chelating calcium at a specific position (for example, aspartic acid or glutamic acid) or a library into which an unnatural amino acid mutation is introduced).
  • an amino acid that changes the binding activity of an antigen-binding molecule to an antigen depending on ion concentration conditions as described above for example, when the metal ion is a calcium ion, the amino acid that forms a calcium-binding motif Any type.
  • Calcium binding motifs are well known to those skilled in the art and are described in detail (eg, Springer et al. (Cell (2000) 102, 275-277), Kawasaki and Kretsinger (Protein Prof. (1995) 2, 305-490) Moncrief et al. (J. Mol. Evol. (1990) 30, 522-562), Chauvaux et al. (Biochem. J. (1990) 265, 261-265), Bairoch and Cox (FEBS Lett.
  • any known calcium-binding motif such as C-type lectin such as ASGPR, CD23, MBR, DC-SIGN and the like can be included in the antigen-binding molecule of the present invention.
  • a calcium-binding motif contained in the antigen-binding domain described in SEQ ID NO: 6 can also be mentioned.
  • amino acids having a metal chelating action can be suitably used as examples of amino acids in which the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen varies depending on the calcium ion concentration conditions.
  • amino acids having a metal chelating action include, for example, serine (Ser (S)), threonine (Thr (T)), asparagine (Asn (N)), glutamine (Gln (Q)), aspartic acid (Asp (D) ) And glutamic acid (Glu (E)) and the like.
  • the position of the antigen-binding domain containing the amino acid is not limited to a specific position. As long as the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen is changed depending on the condition of the calcium ion concentration, the heavy chain variable region that forms the antigen-binding domain or It can be at any position in the light chain variable region. That is, the antigen-binding domain of the present invention is mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences from each other, the amino acid that changes the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen depending on the calcium ion concentration condition. Can be obtained from a library.
  • the antigen-binding domain of the present invention can be obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences from each other, wherein the amino acid is contained in the heavy chain CDR3.
  • the antigen-binding domains of the present invention are sequences of each other whose amino acids are contained at positions 95, 96, 100a and / or 101 represented by the Kabat numbering of the heavy chain CDR3.
  • the antigen-binding domain of the present invention contains an amino acid that changes the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen depending on the calcium ion concentration condition in the antigen-binding domain of the light chain. It can be obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences. In another embodiment, the antigen-binding domain of the present invention can be obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences from each other, wherein the amino acid is contained in CDR1 of the light chain.
  • the antigen-binding domain of the present invention is an antigen-binding domain comprising antigen-binding molecules having different sequences from each other, which are contained in positions 30, 31, and / or 32 represented by Kabat numbering of light chain CDR1. It can be obtained from the main library.
  • the antigen-binding domain of the present invention can be obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences from each other, the amino acid residues of which are contained in light chain CDR2.
  • the antigen-binding domain of the present invention can be obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different amino acid residues contained in the light chain CDR3.
  • the antigen-binding domain of the present invention is obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences, wherein the amino acid residue is contained in position 92 represented by Kabat numbering of light chain CDR3. obtain.
  • the antigen-binding domain of the present invention has an antigen-binding sequence in which the amino acid residues are different in sequence from each other contained in two or three CDRs selected from CDR1, CDR2 and CDR3 of the light chain described above. It can be obtained as a different embodiment of the present invention from a library consisting mainly of molecules. Furthermore, the antigen-binding domain of the present invention includes the amino acid residue at any one or more of positions 30, 31, 32, 50, and / or 92 represented by the Kabat numbering of the light chain. It can be obtained from a library mainly composed of antigen-binding molecules having different sequences.
  • these amino acid residues may be included alone as long as these amino acid residues form a calcium-binding motif and / or the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen varies depending on the calcium ion concentration conditions.
  • two or more of these amino acids may be included in combination.
  • troponin C, calmodulin, parvalbumin, myosin light chain, etc. which have multiple calcium ion binding sites and are thought to be derived from a common origin in molecular evolution, are known to contain the binding motif. It is also possible to design light chain CDR1, CDR2 and / or CDR3.
  • cadherin domain for the above purpose, EF hand contained in calmodulin, C2 domain contained in protein kinase C, Gla domain contained in blood coagulation protein FactorIX, C-type lectin contained in asialoglycoprotein receptor and mannose receptor, LDL
  • the A domain, annexin, thrombospondin type 3 domain and EGF-like domain contained in the receptor can be appropriately used.
  • the antigen-binding domain of the present invention can be obtained from a library comprising a plurality of antigen-binding molecules of different sequences of the present invention by combining with a light chain variable region prepared as a randomized variable region sequence library.
  • the ion concentration is a calcium ion concentration
  • SEQ ID NO: 7 (6RL # 9-IgG1) or SEQ ID NO: 8 (6KC4-1 # 85-IgG1)
  • the light chain variable region prepared as a randomized variable region sequence library it can be prepared by appropriately selecting from light chain variable regions having germline sequences.
  • a heavy chain variable region sequence described in SEQ ID NO: 7 (6RL # 9-IgG1) or SEQ ID NO: 8 (6KC4-1 # 85-IgG1) and a light chain variable region having a germline sequence A combined library is preferred.
  • library refers to a plurality of antigen-binding molecules or a plurality of fusion polypeptides containing antigen-binding molecules, or nucleic acids and polynucleotides encoding these sequences.
  • sequences of a plurality of antigen-binding molecules or a plurality of fusion polypeptides comprising antigen-binding molecules contained in the library are not single sequences but are fusion polypeptides comprising antigen-binding molecules or antigen-binding molecules having different sequences from each other.
  • Methods for displaying fusion polypeptides comprising antibody fragments on the surface of bacteriophage as such libraries are known in the art and are described, for example, in WO1992001047 and herein.
  • the ion concentration condition refers to a hydrogen ion concentration condition or a pH condition.
  • the condition of the concentration of protons that is, the nuclei of hydrogen atoms
  • the pH is defined as -log10aH +. If the ionic strength of the aqueous solution is lower (than, for example, 10- 3), aH + is approximately equal to hydrogen ion strength. For example, the ion product of water at 25 ° C.
  • an aqueous solution having a pH lower than 7 is acidic
  • an aqueous solution having a pH higher than 7 is alkaline.
  • the pH condition when used as the ion concentration condition, is a high hydrogen ion concentration or low pH, that is, a pH acidic range condition, and a low hydrogen ion concentration or high pH, that is, a neutral pH range. These conditions are listed.
  • the binding activity changes depending on the pH condition.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen depends on the difference in conditions between high hydrogen ion concentration or low pH (pH acidic range) and low hydrogen ion concentration or high pH (pH neutral range). That changes.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen in the neutral pH condition is higher than the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen in the acidic pH condition.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen in the acidic pH range is higher than the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen in the neutral pH range.
  • the neutral pH range is not particularly limited to a unique value, but can be preferably selected from pH 6.7 to pH 10.0.
  • the pH can be selected between pH 6.7 and pH 9.5.
  • the pH can be selected from between pH 7.0 and pH 9.0, and in other embodiments, the pH can be selected from between pH 7.0 and pH 8.0.
  • Particularly preferred is pH 7.4, which is close to the pH in plasma (blood) in vivo.
  • the acidic pH range is not particularly limited to a unique numerical value, but can be preferably selected from pH 4.0 to pH 6.5.
  • the pH can be selected between pH 4.5 and pH 6.5.
  • it can be selected from between pH 5.0 and pH 6.5, and in other embodiments it can be selected from between pH 5.5 and pH 6.5.
  • Particularly preferred is pH 5.8 that is close to the ionized calcium concentration in the early endosome in vivo.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding molecule at a high hydrogen ion concentration or low pH is lower than that at a low hydrogen ion concentration or high pH (pH neutral range).
  • the antigen-binding activity of an antigen-binding molecule at a pH selected between pH 4.0 and pH 6.5 is greater than the antigen-binding activity at a pH selected between pH 6.7 and pH 10.0. It means weak.
  • the antigen-binding molecule has an antigen-binding activity at a pH selected between pH 4.5 and pH 6.5, compared to an antigen-binding activity at a pH selected between pH 6.7 and pH 9.5.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen at a pH selected from between pH 5.0 and pH 6.5 is selected from between pH 7.0 and pH 9.0. It means that it is weaker than the binding activity to the antigen.
  • the antigen-binding molecule has an antigen-binding activity at a pH selected between pH 5.5 and pH 6.5, and has an antigen-binding activity at a pH selected between pH 7.0 and pH 8.0. Means weaker. Particularly preferably, it means that the antigen-binding activity at the pH in the early endosome in vivo is weaker than the antigen-binding activity at the pH in plasma in vivo, specifically, the antigen-binding molecule at pH 5.8. It means that the binding activity to the antigen is weaker than the binding activity to the antigen at pH 7.4.
  • Whether or not the binding activity of the antigen-binding domain of the present invention to the antigen is changed depending on the pH condition can be determined by using, for example, a known measurement method as described in the above-mentioned binding activity section. That is, the binding activity is measured under different pH conditions in the measurement method. For example, the binding of the antigen-binding molecule containing the antigen-binding domain of the present invention under the condition of pH neutral to the antigen rather than the binding activity of the antigen-binding molecule containing the antigen-binding domain of the present invention under the condition of acidic pH to the antigen. In order to confirm that the activity changes to a higher level, the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen under conditions of acidic pH range and neutral pH range is compared.
  • the expression “the binding activity to an antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range is lower than the binding activity to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH ie pH neutral” is Expressing that the binding activity of an antigen-binding molecule to an antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range, is higher than that to antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range You can also.
  • the binding activity to an antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie, pH acidic range is lower than the binding activity to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral”.
  • the binding activity to the antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range is weaker than the ability to bind to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral pH.
  • High hydrogen ion concentration or low pH or pH acidic binding activity to antigen is lower than low hydrogen ion concentration or high pH or pH neutral pH binding activity" Or binding activity to antigens under conditions of low pH, ie acidic pH range, at low hydrogen ion concentration or at high pH, ie pH Sometimes referred to as weakly than the binding affinity to the antigen under the condition of frequency. "
  • Conditions other than the hydrogen ion concentration or pH when measuring the binding activity to the antigen can be appropriately selected by those skilled in the art and are not particularly limited.
  • measurement can be performed under the conditions of HEPES buffer and 37 ° C.
  • Biacore GE Healthcare
  • the antigen-binding molecule containing the antigen-binding domain is flowed as an analyte to the chip on which the antigen is immobilized. Thus, it is possible to evaluate the binding activity to the membrane antigen.
  • the antigen-binding molecule of the present invention as long as the binding activity to the antigen in the condition of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range is weaker than the binding activity to the antigen in the condition of low hydrogen ion concentration or high pH, pH neutral range
  • the ratio of the binding activity to the antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH or pH acidic range and the binding activity to the antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH or pH neutral range is not particularly limited, but preferably Is the ratio of KD (dissociation constant) under high hydrogen ion concentration or low pH or acidic pH range to antigen and KD under low hydrogen ion concentration or high pH or pH neutral pH (pH 5.
  • the value of / KD (pH 7.4) is 2 or more, more preferably the value of KD (pH 5.8) / KD (pH 7.4) is 10 or more, more preferably KD (pH 5) .8)
  • the value of / KD (pH 7.4) is 40 or more.
  • the upper limit of the value of KD (pH 5.8) / KD (pH 7.4) is not particularly limited, and may be any value such as 400, 1000, 10000, etc. as long as it can be produced by a person skilled in the art.
  • KD dissociation constant
  • apparent dissociation constant apparent dissociation constant
  • Biacore GE healthcare
  • Scatchard plot flow cytometer, etc. It is possible to use.
  • the ratio of the binding activity of the antigen-binding molecule of the present invention to the antigen in the condition of high hydrogen ion concentration or low pH, that is, pH acidic range, and the binding activity to the antigen in the condition of low hydrogen ion concentration or high pH, pH neutral range As another index to be shown, for example, kd (Dissociation rate constant) which is a dissociation rate constant can also be suitably used.
  • kd dissociation rate constant
  • KD dissociation constant
  • the value of hydrogen ion concentration or the ratio of kd (dissociation rate constant) at high pH, i.e. neutral pH condition is preferably the value of kd (in acidic pH condition) / kd (in neutral pH condition) It is 2 or more, more preferably 5 or more, further preferably 10 or more, more preferably 30 or more.
  • Kd (in the acidic pH range) / kd (in the neutral pH range) value is not particularly limited, and any value such as 50, 100, 200, etc., as long as it can be prepared by the common general knowledge of those skilled in the art But you can.
  • kd dissociation rate constant
  • apparent kd apparent dissociation rate constant
  • Biacore GE healthcare
  • a flow cytometer a flow cytometer or the like
  • the binding activity to an antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, that is, pH acidic range is binding to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, that is, pH neutral range.
  • An antigen-binding domain or antibody having a lower activity can be obtained by screening an antigen-binding domain or antibody comprising the following steps (a) to (c).
  • the binding activity to the antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range which is one aspect provided by the present invention, is binding to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range.
  • Antigen-binding domains or antibodies with lower activity can be obtained by screening antigen-binding domains or antibodies or libraries thereof comprising the following steps (a) to (c).
  • step (a) contacting an antigen-binding domain or antibody or a library thereof in a neutral pH range with an antigen; (b) placing the antigen-binding domain or antibody bound to the antigen in step (a) under conditions in the acidic pH range; and (c) A step of isolating the antigen-binding domain or antibody dissociated in the step (b).
  • binding activity to an antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range which is one aspect provided by the present invention, is binding to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range.
  • Antigen-binding domains or antibodies with lower activity can be obtained by screening antigen-binding domains or antibodies or libraries thereof comprising the following steps (a) to (d).
  • step (a) contacting the antigen-binding domain or antibody library with the antigen under acidic pH conditions; (b) selecting an antigen-binding domain or antibody that does not bind to the antigen in step (a), (c) binding the antigen-binding domain or antibody selected in step (b) to an antigen under pH neutral conditions; and (d) A step of isolating the antigen binding domain or antibody bound to the antigen in the step (c).
  • the binding activity to the antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range which is one aspect provided by the present invention, is binding to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range.
  • An antigen-binding domain or antibody having a lower activity can be obtained by a screening method including the following steps (a) to (c).
  • step (a) contacting an antigen-binding domain or an antibody library with a column immobilized with an antigen under neutral pH conditions; (b) eluting the antigen-binding domain or antibody bound to the column in the step (a) from the column under conditions of acidic pH; and (c) A step of isolating the antigen-binding domain or antibody eluted in the step (b).
  • the binding activity to the antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range which is one aspect provided by the present invention, is binding to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range.
  • An antigen-binding domain or antibody having a lower activity can be obtained by a screening method including the following steps (a) to (d).
  • step (a) a step of passing an antigen-binding domain or an antibody library through an antigen-immobilized column under acidic pH conditions; (b) recovering the antigen-binding domain or antibody eluted without binding to the column in the step (a), (c) binding the antigen-binding domain or antibody recovered in step (b) to an antigen under pH neutral conditions; and (d) A step of isolating the antigen binding domain or antibody bound to the antigen in the step (c).
  • the binding activity to the antigen under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range which is one aspect provided by the present invention, is binding to antigen under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range.
  • An antigen-binding domain or antibody having a lower activity can be obtained by a screening method including the following steps (a) to (d).
  • step (a) contacting the antigen-binding domain or antibody library with the antigen under neutral pH conditions; (b) obtaining an antigen-binding domain or antibody bound to the antigen in the step (a), (c) placing the antigen-binding domain or antibody obtained in the step (b) under conditions of an acidic pH range; and (d) isolating an antigen-binding domain or antibody having an antigen-binding activity that is weaker than the criterion selected in the step (b) in the step (c).
  • the above process may be repeated twice or more. Therefore, according to the present invention, in the above-described screening method, in the conditions in the acidic pH range obtained by the screening method further comprising the step of repeating steps (a) to (c) or (a) to (d) twice or more.
  • An antigen-binding domain or antibody is provided that has a lower binding activity for the antigen than that for the antigen at neutral pH conditions.
  • the number of times the steps (a) to (c) or (a) to (d) are repeated is not particularly limited, but is usually within 10 times.
  • the antigen-binding domain or the antigen-binding activity of the antibody in a high hydrogen ion concentration condition or low pH is not particularly limited as long as the antigen-binding activity is between pH 4.0 and 6.5.
  • Preferable pH includes antigen binding activity between pH 4.5 and 6.6.
  • an antigen binding activity between pH 5.0 and 6.5, and further an antigen binding activity between pH 5.5 and 6.5 can be mentioned.
  • More preferable pH includes the pH in the early endosome in the living body, specifically, the antigen binding activity at pH 5.8.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding domain or antibody at low hydrogen ion concentration conditions or high pH, ie, neutral pH range is not particularly limited as long as the antigen-binding activity is between 6.7 and 10, but the preferred pH is pH May have an antigen binding activity between 6.7 and 9.5.
  • an antigen binding activity between pH 7.0 and 9.5, and further an antigen binding activity between pH 7.0 and 8.0 can be mentioned.
  • a more preferable pH can be a pH in plasma in a living body, specifically, an antigen binding activity at a pH of 7.4.
  • the antigen-binding activity of an antigen-binding domain or antibody can be measured by methods known to those skilled in the art, and conditions other than the ionized calcium concentration can be appropriately determined by those skilled in the art.
  • the antigen-binding activity of an antigen-binding domain or antibody is KD (Dissociation constant), apparent KD (Apparent dissociation constant), dissociation rate kd (Dissociation rate: dissociation rate constant), or apparent Kd (Apparent dissociation: apparent dissociation rate constant) and the like. These can be measured by methods known to those skilled in the art. For example, Biacore (GE healthcare), Scatchard plot, FACS and the like can be used.
  • an antigen-binding domain or antibody having an antigen-binding activity at a low hydrogen ion concentration or at a high pH, ie, pH neutral range is higher than an antigen-binding activity at a high hydrogen ion concentration, or at a low pH, pH acidic condition.
  • the step of selecting an antigen-binding domain or an antibody whose antigen-binding activity under conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie pH acidic range, is lower than antigen binding activity under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, ie pH neutral range Means the same.
  • the antigen binding activity at low hydrogen ion concentration or high pH or pH neutral conditions is higher than the antigen binding activity at high hydrogen ion concentration or low pH or pH acidic conditions, in low hydrogen ion concentration or high pH or pH
  • the antigen binding activity in is at least 2 times the antigen binding activity under the conditions of high hydrogen ion concentration or low pH, ie, pH acidic range, more preferably 10 times or more, and more preferably 40 times or more.
  • the antigen-binding domain or antibody of the present invention to be screened by the above screening method may be any antigen-binding domain or antibody.
  • the above-described antigen-binding domain or antibody can be screened.
  • an antigen binding domain or antibody having a natural sequence may be screened, or an antigen binding domain or antibody having an amino acid sequence substituted may be screened.
  • the antigen-binding domain or antibody of the present invention to be screened by the above screening method may be prepared in any way, for example, a pre-existing antibody, a pre-existing library (such as a phage library), an animal Antibodies or libraries prepared from hybridomas obtained from immunization or B cells from immunized animals, amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 (such as histidine and glutamic acid) and unnatural amino acid mutations in these antibodies and libraries Introduced antibodies or libraries (amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 (for example, histidine and glutamic acid) or unnatural amino acid content increased or amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 at specific locations ( (For example, histidine or glutamic acid) or unnatural amino acid mutation library Etc.) can be used.
  • a pre-existing antibody such as a phage library
  • Antigen binding activity or high hydrogen ion concentration under conditions of low hydrogen ion concentration or high pH, pH neutral range, from antigen-binding domains or antibodies prepared from hybridomas obtained from animal immunization or B cells from immunized animals Alternatively, as a method for obtaining an antigen-binding domain or antibody having an antigen-binding activity higher than the antigen-binding activity under low pH, that is, acidic pH range, for example, at least one of the amino acid in the antigen-binding domain or antibody as described in WO2009 / 125825, Amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 (for example histidine or glutamic acid) or unnatural amino acid mutations or in antigen binding domains or antibodies, amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 (for example histidine And an antigen-binding molecule or antibody in which an unnatural amino acid is inserted.
  • side chain pKa of 4.0-8.0 for example histidine or glutamic acid
  • antigen binding activity in the acidic pH range is higher than before substitution or insertion. It is weaker than the antigen binding activity in the neutral pH range (the value of KD (pH acidic range) / KD (pH neutral range) increases, or the value of kd (pH acidic range) / kd (pH neutral range) Any part may be used as long as it becomes larger.
  • the antigen-binding molecule is an antibody, an antibody variable region, CDR, and the like are preferably exemplified.
  • a person skilled in the art can appropriately determine the number of amino acids to be substituted with amino acids (for example, histidine and glutamic acid) whose side chain has a pKa of 4.0-8.0, or unnatural amino acids, or the number of amino acids to be inserted.
  • amino acids for example, histidine and glutamic acid
  • side chain has a pKa of 4.0-8.0, or unnatural amino acids, or the number of amino acids to be inserted.
  • amino acid eg histidine or glutamic acid
  • amino acid eg histidine or glutamic acid
  • one amino acid eg histidine or glutamic acid
  • one amino acid eg histidine or glutamic acid
  • two or more amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 (eg histidine or glutamic acid) or unnatural amino acids
  • side chain pKa of 4.0-8.0 The above amino acids (for example, histidine and glutamic acid) and unnatural amino acids can be inserted.
  • substitution of amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 for example, histidine or glutamic acid
  • non-natural amino acids for example, amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0
  • insertion of amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 for example, histidine or glutamic acid
  • unnatural amino acids for example, amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0
  • other amino acid deletions, additions, insertions and / or substitutions can be performed simultaneously.
  • Substitution with amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 or non-natural amino acids or insertion of amino acids with side chain pKa of 4.0-8.0 (eg histidine or glutamic acid) or unnatural amino acids
  • An amino acid (such as histidine or glutamic acid) whose side chain pKa is 4.0-8.0 or an unnatural amino acid, which can be randomly performed by a method such as histidine or the like in which alanine in alanine scanning is replaced by histidine or the like KD (pH acidic range) / KD (pH neutral range) or kd (pH acidic range) / kd from antigen-binding domains or antibodies in which substitution or insertion mutations are randomly introduced compared to before the mutation
  • An antigen-binding molecule having an increased (pH neutral range) value can be selected.
  • an amino acid having a side chain pKa of 4.0-8.0 for example, histidine or glutamic acid
  • a non-natural amino acid is mutated, and the antigen binding activity in the acidic pH range is an antigen in the neutral pH range.
  • antigen-binding molecules with lower than binding activity include, for example, antigen binding in the neutral pH range after mutation to amino acids (eg histidine or glutamic acid) whose side chain has a pKa of 4.0-8.0 or unnatural amino acids
  • Preferred examples include an antigen-binding molecule whose activity is equivalent to that of an amino acid having a side chain pKa of 4.0-8.0 (for example, histidine or glutamic acid) or an antigen-binding activity in a neutral pH range before mutation to an unnatural amino acid. It is done.
  • an amino acid having a side chain pKa of 4.0-8.0 (for example, histidine or glutamic acid) or an antigen-binding molecule after mutation of a non-natural amino acid is an amino acid having a side chain pKa of 4.0-8.0 (for example, histidine Or glutamic acid) or an antigen-binding molecule equivalent to the antigen-binding molecule before the mutation of the unnatural amino acid means that the amino acid whose side chain has a pKa of 4.0-8.0 (for example, histidine or glutamic acid) or before the mutation of the unnatural amino acid
  • the antigen-binding activity of an antigen-binding molecule is 100%
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding molecule after mutation of an amino acid (for example, histidine or glutamic acid) whose side chain is pKa 4.0-8.0 or an unnatural amino acid is It means at least 10% or more, preferably 50% or more, more preferably 80% or more, more
  • an antigen-binding molecule When the antigen-binding activity of an antigen-binding molecule is reduced by substitution or insertion into an amino acid (for example, histidine or glutamic acid) whose side chain has a pKa of 4.0-8.0 or an unnatural amino acid, Antigen binding activity due to substitution, deletion, addition and / or insertion of multiple amino acids, etc. before substitution or insertion of amino acids (eg histidine or glutamic acid) whose side chain has a pKa of 4.0-8.0 or unnatural amino acids It can be made equivalent to antigen binding activity.
  • amino acid for example, histidine or glutamic acid
  • substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids after substitution or insertion of an amino acid such as histidine or glutamic acid
  • an amino acid such as histidine or glutamic acid
  • side chain has a pKa of 4.0-8.0 or an unnatural amino acid
  • antigen-binding molecules whose binding activity is equivalent by performing.
  • the antigen-binding molecule is a substance containing an antibody constant region
  • another preferred embodiment of the antigen-binding molecule whose antigen-binding activity in the acidic pH range is lower than the antigen-binding activity in the neutral pH range is the antigen-binding molecule.
  • a method in which the antibody constant region contained in is modified.
  • the constant region described in SEQ ID NO: 9, 10, 11, or 12 is preferably exemplified.
  • the antigen-binding domain or antibody of the present invention to be screened by the above screening method may be prepared in any way, for example, ions
  • concentration condition is a hydrogen ion concentration condition or pH condition
  • a pre-existing antibody such as a phage library
  • a hybridoma or immunized animal obtained from immunization of the animal
  • Antibodies or libraries prepared from B cells from the above or antibodies or libraries (side chains) introduced with amino acid mutations such as histidine or glutamic acid having side chain pKa of 4.0-8.0 or unnatural amino acids in these antibodies or libraries
  • Amino acids with a pKa of 4.0-8.0 eg histidine or glutamic acid
  • libraries with a high content of unnatural amino acids, amino acids whose side chain has a pKa of 4.0-8.0 such as
  • amino acids having electron donating properties include natural amino acids such as histidine or glutamic acid, histidine analog (US20090035836), m-NO2-Tyr (pKa 7.45), 3,5-Br2-Tyr (pKa 7.21) or 3 And non-natural amino acids such as 5-I2-Tyr (pKa 7.38) (Bioorg. Med. Chem. (2003) 11 (17), 3761-2768). It is known that it can be controlled (Angew. Chem. Int. Ed. (2005) 44, 34, Chem Soc Rev. (2004) 33 (7), 422-430, Amino Acids. (1999) 16 ( 3-4), 345-379).
  • a light chain variable region and a randomized variable region sequence introduced with “at least one amino acid residue that changes the binding activity of an antigen-binding molecule to an antigen depending on the hydrogen ion concentration” By combining with a heavy chain variable region prepared as a library, a library containing a plurality of antigen binding molecules having different sequences from each other of the present invention can be prepared.
  • Non-limiting examples of the amino acid residues include amino acid residues contained in the light chain CDR1.
  • non-limiting examples of the amino acid residues include amino acid residues contained in the light chain CDR2.
  • an amino acid residue contained in CDR3 of the light chain is also exemplified.
  • amino acid residues in which the amino acid residue is contained in CDR1 of the light chain positions 24, 27, 28, represented by Kabat numbering in CDR1 of the light chain variable region, Examples include amino acid residues at positions 31, 32 and / or 34.
  • amino acid residues that is included in the light chain CDR2 of the amino acid residue the 50-position, 51-position, 52-position, 53-position represented by Kabat numbering in the CDR2 of the light chain variable region Examples include amino acid residues at positions 54, 55 and / or 56.
  • amino acid residue is included in the CDR3 of the light chain, and as a non-limiting example of the amino acid residue, positions 89, 90, 91, 92, represented by Kabat numbering in the CDR3 of the light chain variable region, Examples include amino acid residues at positions 93, 94 and / or 95A.
  • these amino acid residues can be included alone, or two or more of these amino acid residues can be combined as long as the binding activity of the antigen-binding molecule to the antigen changes depending on the hydrogen ion concentration conditions. Can be included.
  • H32, H61, L53, L90, and L94 are considered to be highly universal alterations.
  • the following sites can be mentioned as preferred modified sites when the antigen is an IL-6 receptor (for example, human IL-6 receptor).
  • Heavy chain H27, H31, H32, H35, H50, H58, H61, H62, H63, H64, H65, H100b, H102
  • Light chain L24, L27, L28, L32, L53, L56, L90, L92, L94
  • preferable combinations when a plurality of portions are combined and substituted with histidine or an unnatural amino acid include, for example, combinations of H27, H31, and H35, combinations of H27, H31, H32, H35, H58, H62, and H102, A combination of L32 and L53, a combination of L28, L32 and L53, and the like can be mentioned.
  • examples of a preferable combination of heavy and light chain substitution sites may include a combination of H27, H31, L32, and L53. These locations can be substituted with histidine or an unnatural amino acid at only one location, or multiple locations can be substituted with histidine or an unnatural amino acid.
  • the antigen-binding molecule is a substance containing an antibody constant region
  • another method for changing the binding of the antigen-binding molecule to the antigen depending on the ion concentration condition is to modify the amino acid in the antibody constant region.
  • an antibody constant region for example, the antibody constant region (SEQ ID NO: 13, SEQ ID NO: 14, SEQ ID NO: 15, SEQ ID NO: 16) described in the examples of WO2009 / 125825 is substituted.
  • a method may be mentioned.
  • a plurality of constant region isotypes (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4) are studied, and the antigen binding activity decreases in the acidic pH range (the dissociation rate in the acidic pH range is high).
  • a method of selecting an isotype Furthermore, by introducing amino acid substitution into the wild type isotype amino acid sequence (wild type IgG1, IgG2, IgG3, IgG4 amino acid sequence), the antigen binding activity in the acidic pH range is reduced (the dissociation rate in the acidic pH range is increased). A method is mentioned.
  • the sequence of the hinge region of the antibody constant region varies greatly depending on the isotype (IgG1, IgG2, IgG3, IgG4), and the difference in the amino acid sequence of the hinge region greatly affects the antigen binding activity, so the appropriate isotype depends on the type of antigen or epitope.
  • an isotype that reduces the antigen-binding activity in the condition of ion concentration for example, in the acidic pH range (increases the dissociation rate in the acidic pH range) can be selected.
  • the hinge region is considered desirable as the amino acid substitution site of the amino acid sequence of the wild type isotype.
  • Antigen-binding molecules whose antigen-binding activity changes depending on the ion concentration conditions should be prepared by performing amino acid substitutions and insertions into antigen-binding molecules that do not have such properties using the method described above.
  • other methods include directly obtaining an antigen-binding molecule having such properties.
  • an antibody obtained by immunizing an animal mae, rat, hamster, rabbit, human immunoglobulin transgenic mouse, human immunoglobulin transgenic rat, human immunoglobulin transgenic rabbit, llama, camel, etc.
  • an antibody obtained by immunizing an animal mae, rat, hamster, rabbit, human immunoglobulin transgenic mouse, human immunoglobulin transgenic rat, human immunoglobulin transgenic rabbit, llama, camel, etc.
  • antibodies having the desired properties can be obtained directly, and binding to an ion concentration-dependent antigen from an antibody library presented in vitro is used as an indicator.
  • the antibody having the desired properties can be directly obtained by screening, and the method is not particularly limited.
  • Modification of amino acids For modification of amino acids in the antigen-binding domain, site-directed mutagenesis (Kunkel et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1985) 82, 488-492)), overlap extension PCR, etc. A known method can be appropriately employed. In addition, as a method for modifying an amino acid to be substituted with an amino acid other than a natural amino acid, a plurality of known methods can also be employed (Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. (2006) 35, 225-249, Proc. Natl Acad. Sci. USA (2003) 100 (11), 6353-6357).
  • a cell-free translation system (Clover Direct (Protein Express) in which a tRNA in which an unnatural amino acid is bound to a complementary amber suppressor tRNA of a UAG codon (amber codon), which is one of the stop codons, is also suitable. Used.
  • Neutralizing activity in one non-limiting embodiment of the present invention, an FcRn-binding domain, an antigen-binding domain whose binding activity to an antigen changes depending on ion concentration conditions, and one whose binding activity to a sugar chain receptor changes depending on ion concentration conditions
  • a pharmaceutical composition comprising an antigen-binding molecule comprising the above sugar chain receptor binding domain.
  • neutralizing activity refers to an activity of inhibiting a biological activity of a ligand having biological activity on a cell, such as a virus or a toxin. That is, a substance having neutralizing activity refers to a substance that binds to the ligand or a receptor to which the ligand binds and inhibits the binding between the ligand and the receptor.
  • a receptor that is blocked from binding to a ligand by neutralization activity cannot exhibit biological activity through the receptor.
  • an antibody having such neutralizing activity is generally called a neutralizing antibody.
  • the neutralizing activity of a test substance can be measured by comparing the biological activity in the presence of a ligand between conditions in the presence or absence of the test substance.
  • IL-6R a type I membrane protein whose amino terminus forms an extracellular domain, forms a heterotetramer with the gp130 receptor that is dimerized by IL-6 (HEINRICH et al. (Biochem. J (1998) 334, 297-314)). Formation of the heterotetramer activates Jak associated with the gp130 receptor. Jak performs autophosphorylation and receptor phosphorylation. The receptor and Jak phosphorylation sites serve as binding sites for molecules belonging to the Stat family with SH2, such as Stat3, MAP kinases, PI3 / Akt, and other proteins and adapters with SH2.
  • Stat bound to the gp130 receptor is phosphorylated by Jak.
  • Phosphorylated Stat forms a dimer that enters the nucleus and regulates transcription of the target gene.
  • Jak or Stat can also participate in signal cascades through other classes of receptors.
  • Deregulated IL-6 signaling cascades are observed in autoimmune disease pathologies and inflammation, and in cancers such as multiple myeloma and prostate cancer.
  • Stat3, which can act as an oncogene is constitutively activated in many cancers.
  • there is crosstalk between the signal cascade from IL-6R and the signal cascade from epidermal growth factor receptor (EGFR) family members Ishikawa et al. (J. Clin. Exp. Hematopathol. (2006) 46 (2), 55-66)).
  • a target molecule can be appropriately set for each target cell of interest and is not limited to the above factors.
  • the neutralizing activity can be evaluated.
  • activation of in vivo signals can also be detected using the transcription-inducing action on a target gene present downstream of the in vivo signal cascade as an index.
  • Changes in the transcription activity of the target gene can be detected by the principle of a reporter assay. Specifically, a reporter gene such as GFP (Green Fluorescence Protein) or luciferase is placed downstream of the transcription factor or promoter region of the target gene, and the reporter activity is measured to measure the change in transcription activity as the reporter activity. can do.
  • GFP Green Fluorescence Protein
  • luciferase is placed downstream of the transcription factor or promoter region of the target gene, and the reporter activity is measured to measure the change in transcription activity as the reporter activity. can do.
  • Commercially available signal activation measurement kits can be used as appropriate (for example, Mercury Pathway Profiling Luciferase System (Clontech), etc
  • neutralizing antibodies are measured by measuring the proliferating activity of the target cells.
  • the neutralization activity of can be evaluated.
  • the following method is suitable as a method for evaluating or measuring the inhibitory effect based on the neutralizing activity of anti-HB-EGF antibody on the proliferation of cells whose proliferation is promoted by growth factors of the EGF family such as HB-EGF. Used for.
  • a method for evaluating or measuring the cytostatic activity in a test tube a method is used in which the uptake of [3H] -labeled thymidine added to the medium by living cells is used as an indicator of DNA replication ability.
  • a dye exclusion method that measures the ability to exclude a dye such as trypan blue outside the cell under a microscope, or an MTT method is used.
  • MTT tetrazolium salt MTT (3- (4,5-dimethylthiazol-2-yl) -2,5-diphenyl tetrazolium bromide) into a blue formazan product.
  • MTT solution is added to the culture solution and allowed to stand for a certain time so that MTT is taken into the cell. .
  • MTT which is a yellow compound
  • MTT is converted into a blue compound by succinate dehydrogenase in the mitochondria in the cell.
  • the blue product is dissolved and colored, and the absorbance is measured to obtain an index of the number of viable cells.
  • reagents such as MTS, XTT, WST-1, and WST-8 are also commercially available (such as nacalai tesque) and can be suitably used.
  • an anti-HB-EGF antibody having the same isotype as the anti-HB-EGF antibody and a binding antibody having no cytostatic activity was used in the same manner as the anti-HB-EGF antibody.
  • the activity can be determined by the antibody exhibiting stronger cytostatic activity than the control antibody.
  • RMG-1 cell line which is an ovarian cancer cell whose proliferation is promoted by HB-EGF, or an extracellular domain of human EGFR and a cell of mouse GCSF receptor
  • Mouse Ba / F3 cells transformed with a vector bound so as to express a gene encoding hEGFR / mG-CSFR, which is a fusion protein in which the inner domain is fused in frame can also be suitably used.
  • those skilled in the art can use the above-mentioned measurement of cell proliferation activity by appropriately selecting cells for evaluating the activity.
  • the antigen-binding molecule provided by the present invention can eliminate the antigen from plasma, it is not always necessary that the antigen-binding molecule itself has neutralizing activity. However, the function of the antigen present in plasma is exhibited by exerting neutralizing activity against the antigen until the antigen is taken into the cell expressing the Fc ⁇ receptor together with the antigen binding molecule by endocytosis via the Fc ⁇ receptor. It is more preferable to shut off.
  • the antigen-binding molecule provided by the present invention can promote the dissociation of the antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule in the cell, it is dissociated from the antigen-binding molecule inside the cell. Antigens are degraded in lysosomes. Therefore, it is not always necessary that the antigen-binding molecule itself has neutralizing activity. However, it is present in plasma by exerting neutralizing activity against the antigen until it is taken into the cell expressing the sugar chain receptor together with the antigen binding molecule by endocytosis via the sugar chain receptor. More preferably, the function of the antigen to be blocked is blocked.
  • the antigen-binding molecule provided by the present invention can reduce the total antigen concentration or free antigen concentration in plasma, it is not always necessary that the antigen-binding molecule itself has a neutralizing activity. However, it is present in plasma by exerting neutralizing activity against the antigen until it is taken into the cell expressing the sugar chain receptor together with the antigen binding molecule by endocytosis via the sugar chain receptor. More preferably, the function of the antigen to be blocked is blocked.
  • sugar chain acceptor sugar chain refers to a group of compounds in which various sugars are linked by glycosidic bonds. Many sugar chains in the living body exist as complex molecules bound to proteins and lipids, and are collectively called complex carbohydrates. Of these, glycoconjugates in which sugars and proteins are bound are glycoproteins.
  • sugar chains recognized by the sugar chain receptor to which the sugar chain receptor binding domain used in the present invention binds include sugar chains constituting glycoproteins.
  • sugar chains of glycoproteins include O-linked sugar chains and N-linked sugar chains. More preferably, examples of the sugar chain of glycoprotein include N-linked sugar chains.
  • the O-linked sugar chain of glycoprotein is O-glycoside bonded to the hydroxyl group of serine or threonine residue of protein.
  • the sugar that directly binds to serine or threonine residues is often N-acetylgalactosamine (GalNAc), and its core structure is (1) galactose (Gal) linked to N-acetylgalactosamine (GalNAc) by ⁇ 1-3 bond , (2) Gal bound to GalNAc by ⁇ 1-3 bond and N-acetylglucosamine bound by ⁇ 1-6 bond (GlcNAc), (3) GlcNAc bound to GalNAc and ⁇ 1-3 bond, (4) GalNAc and ⁇ 1 GlcNAc bound by -3 bond, GlcNAc bound by ⁇ 1-6 bond, (5) GlcNAc bound by GalNAc and ⁇ 1-6 bond, (6) GalNAc bound by GalNAc and ⁇ 1-6 bond, (7) GalNAc It is composed of eight Gals linked by ⁇ 1-3 bonds
  • N-linked sugar chains of glycoproteins have Man 6 (Man ⁇ 1-3) Man ⁇ 1-4GlcNAc ⁇ 1-4GlcNAc as a common mother nucleus structure, which is called a trimannosyl core. Based on the structure and site of the sugar residue added to the trimannosyl core, N-linked sugar chains are classified into three subgroups.
  • the complex type sugar chain does not contain a mannose residue other than the trimannosyl core.
  • High mannose type sugar chain contains only ⁇ -mannose residue in addition to trimannosyl core.
  • the sugar chains of this group contain the heptasaccharide Man ⁇ 1-6 (Man ⁇ 1-3) Man ⁇ 1-6 (Man ⁇ 1-3) Man ⁇ 1-4GlcNAc ⁇ 1-4GlcNAc as a common mother nucleus.
  • one or two ⁇ -mannosyl groups bind to the Man ⁇ 1-6 arm of the trimannosyl core as in the case of the high mannose type, and the same side chain as the complex type sugar chain Man ⁇ 1 -3 Combined with arm.
  • the presence or absence of fucose binding to the C-6 position of GlcNAc located at the reducing end of the trimannosyl core, and the presence or absence of ⁇ -GlcNAc binding to the C-4 position of the ⁇ mannosyl residue (called bisecting GlcNAc) Contributes to the diversity of the structure of complex sugar chains.
  • the complex type contains the most diverse structures.
  • Sugar chain receptor refers to a receptor that recognizes and binds to the above sugar chain. Any molecule can be used as a sugar chain receptor as long as it binds to the recognizing sugar chain, but a preferred receptor is a receptor expressed on a cell. For example, it has been shown that O-linked sugar chains on CD99 play an important role in binding by PILR (paired Ig-like type 2 receptor) (The Journal of immunology (2008) vol. 180 ( 3), 1686-1693). It is also known that an asialoglycoprotein receptor binds to an N-linked sugar chain whose terminal is galactose. Furthermore, it is known that a mannose receptor binds to an N-linked sugar chain whose terminal is mannose.
  • Such a receptor is suitably used in the present invention as a sugar chain receptor. That is, the antigen-binding molecule in the present invention has a domain (sugar chain receptor-binding domain) that binds to such a receptor. Therefore, when the sugar chain receptor is an asialoglycoprotein receptor, an N-linked sugar chain whose terminal is galactose can be suitably used as the sugar chain receptor binding domain contained in the antigen-binding molecule of the present invention. . Further, when the sugar chain receptor is a mannose receptor, an N-linked sugar chain having a mannose at its end can be suitably used as the sugar chain receptor binding domain contained in the antigen-binding molecule in the present invention.
  • the antigen-binding molecule of the present invention has one or more binding domains for a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor.
  • the binding domain for a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor has an antigen-binding molecule that has a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor, in the neutral pH range. If the binding activity with the body is lower than the binding activity with the sugar chain receptor in the neutral pH range, the type and number are not particularly limited.
  • a domain having binding activity for a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor can be used directly or indirectly.
  • Such a domain examples include a sugar chain having a binding activity directly to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor; an Fc domain of an IgG type immunoglobulin; a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor Examples thereof include an antibody against the anti-sugar chain receptor, particularly a binding peptide against the human sugar chain receptor; a Scaffold molecule against the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, and the like.
  • the sugar chain receptor has a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor in the neutral pH range, and the sugar chain receptor has a binding activity to the sugar chain receptor in the acidic pH range.
  • a sugar chain receptor-binding domain having a lower binding activity than is preferred.
  • the domain has a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor, in the neutral pH range in advance, and the binding activity to the sugar chain receptor in the acidic pH range is a sugar chain receptor in the pH neutral range.
  • a sugar chain receptor binding domain having a lower binding activity than the above, it can be used as it is.
  • the binding activity in the acidic pH range between the sugar chain receptor-binding domain having an N-linked sugar chain whose end is galactose and the asialoglycoprotein receptor, which is a sugar chain receptor that binds to the sugar chain, is pH neutral.
  • a preferable example is lower than the binding activity in.
  • the binding activity in the acidic pH range between the sugar chain receptor-binding domain having an N-linked sugar chain whose end is mannose and the mannose receptor, which is a sugar chain receptor that binds to the sugar chain is also in the neutral pH range.
  • a preferable example is lower than the binding activity in.
  • Sugar chain receptors in the neutral pH range especially when the sugar chain receptor binding domain has no or weak binding activity to human sugar chain receptors, by modifying amino acids in the antigen binding molecule, In particular, binding activity to human sugar chain receptors can be obtained.
  • binding to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor by modifying an amino acid in a domain having a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor, in the neutral pH range in advance. The activity can be enhanced.
  • the amino acid modification of the binding domain for a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor is performed by comparing the binding activity to the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, in the neutral pH range before and after the amino acid modification. Desired modifications can be found.
  • the binding activity of the sugar chain receptor binding domain to the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, in the acidic pH range is not lower than the binding activity to the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, in the neutral pH range.
  • the binding activity with a sugar chain receptor in the acidic pH range, particularly a human sugar chain receptor has a sugar chain receptor in the neutral pH range, particularly a human sugar chain. Binding activity can be obtained that is lower than the binding activity with the receptor.
  • the amino acid modification of the binding domain for the sugar chain receptor includes the binding activity to the sugar chain receptor in the acidic pH range before and after the amino acid modification, particularly the binding activity to the human sugar chain receptor and the sugar in the neutral range.
  • the desired modification can be found by comparing the binding activity to chain receptors, particularly human sugar chain receptors.
  • the sugar chain receptor binding domain can be introduced into sites other than the antigen binding domain and the FcRn binding domain constituting the antigen binding molecule. Moreover, as long as the binding to the antigen by the antigen binding domain is not inhibited, the sugar chain receptor binding domain can be introduced into any part of the structure of the antigen binding molecule.
  • the site can be introduced into the antigen-binding domain as long as it does not inhibit the binding to the antigen by the antigen-binding domain, or can be introduced into other sites.
  • the sugar chain receptor-binding domain can be introduced at any site in the structure of the antigen-binding molecule as long as it does not inhibit the binding between the FcRn-binding domain of the antigen-binding molecule and FcRn, particularly human FcRn.
  • the hinge part of an IgA antibody can be a candidate amino acid sequence of a sugar chain receptor binding domain for binding an O-linked sugar chain
  • X is an amino acid other than Pro, called Asn-X-Ser / Thr
  • a motif sequence to which an N-linked sugar chain is added can be a candidate amino acid sequence of a sugar chain receptor binding domain for binding an N-linked sugar chain.
  • An antigen-binding molecule of the present invention comprising a sugar chain receptor-binding domain to which a desired sugar chain is bound from a culture solution of a host cell as described below, into which a gene encoding an antigen-binding molecule containing such an amino acid sequence has been introduced. Can be produced.
  • the sugar chain receptor binding domain may be chemically created.
  • a chemical ligand such as a galactose derivative that mimics an N-type sugar chain having a galactose end, a mannose derivative that mimics a high-mannose sugar chain, or a derivative that mimics sialic acid is covalently conjugated to an antigen-binding molecule. May be.
  • a chemical ligand such as a galactose derivative that mimics an N-type sugar chain having a galactose end, a mannose derivative that mimics a high-mannose sugar chain, or a derivative that mimics sialic acid is covalently conjugated to an antigen-binding molecule.
  • amino acid of the antigen binding site to be conjugated examples include lysine and cysteine, but are not limited thereto.
  • a method of conjugating to a specific part of an antigen-binding molecule a method known to those skilled in the art, such as substituting an amino acid at the conjugation site with cysteine, or substituting lysine at a site where conjugation is not desired with another amino acid, etc.
  • methods known to those skilled in the art such as a method of reacting maleimide and cysteine thiol, a method of reacting activated ester and lysine can be used.
  • conditions other than pH at the time of measuring the binding activity to antigen and FcRn, particularly human FcRn can be appropriately selected by those skilled in the art, they are not limited to specific methods. For example, it can be measured under conditions of MES buffer and 37 ° C. as described in WO2009 / 125825.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding molecule and the measurement of the binding activity to FcRn, particularly human FcRn can be carried out by methods known to those skilled in the art. For example, it can be measured using Biacore (GE Healthcare).
  • the binding activity between the antigen-binding molecule and the antigen is measured by flowing the antigen as an analyte to the chip on which the antigen-binding molecule is immobilized.
  • the antigen is a membrane-type antigen, it is possible to evaluate the binding activity to the membrane-type antigen by flowing the antigen-binding molecule as an analyte to the chip on which the antigen is immobilized. is there.
  • Measurement of the binding activity of an antigen-binding molecule and FcRn, particularly human FcRn can be evaluated by flowing FcRn, particularly human FcRn or antigen-binding molecule, as an analyte, respectively, onto a chip on which the antigen-binding molecule or FcRn, particularly human FcRn is immobilized.
  • the binding activity to FcRn, particularly human FcRn in the acidic pH range means the binding activity to FcRn, particularly human FcRn, at pH 4.0 to pH 6.5.
  • the binding activity to FcRn, particularly human FcRn in the acidic pH range is preferably any pH between pH 5.5 and pH 6.5, for example, pH 5.5, 5.6, 5.7, 5.8, 5.9, 6.0, 6.1, 6.2, 6.3 , 6.4, and 6.5, particularly preferably any pH between pH 5.8 and pH 6.0 close to the pH in the early endosome in vivo, for example, pH 5.
  • the binding activity for the antigen-binding molecule of the present invention containing the FcRn binding domain and FcRn, particularly human FcRn can be evaluated at any temperature from 10 ° C. to 50 ° C. as the temperature used for measuring the binding activity.
  • any temperature from 15 ° C. to 40 ° C. can be used to measure the binding activity of the antigen-binding molecules of the invention comprising an FcRn binding domain to FcRn, particularly human FcRn.
  • the binding activity of the antigen-binding molecule of the present invention comprising an FcRn-binding domain and FcRn, particularly human FcRn, for example 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, Any temperature from 20 ° C. to 35 ° C., such as any of 30, 31, 32, 33, 34, and 35 ° C. may be used.
  • the term “does not inhibit the binding of an antigen to an antigen by an antigen-binding domain” means that the antigen-binding molecule has an antigen-binding activity by introducing a sugar chain receptor-binding domain, and the antigen-binding molecule before the introduction of the sugar chain receptor-binding domain has It means that 20% or more, preferably 50% or more, more preferably 80% or more, more preferably 90% or more of the antigen binding activity is maintained.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding molecule is reduced by the introduction of the sugar chain receptor-binding domain, the sugar chain is replaced by one or more amino acids in the antigen-binding molecule, such as substitution, deletion, addition and / or insertion.
  • the antigen-binding activity before introduction of the receptor-binding domain can be changed to the same extent.
  • antigen binding molecules whose binding activities are equivalent by substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids after introduction of such a sugar chain receptor binding domain are also included. It is.
  • the binding to the FcRn, particularly human FcRn, by the sugar chain receptor binding domain is not inhibited. It means that 20% or more, preferably 50% or more, more preferably 80% or more, more preferably 90% or more of the binding activity to FcRn, particularly human FcRn, possessed by the antigen-binding molecule before introduction is maintained.
  • an antigen binding molecule to FcRn is reduced by introduction of a sugar chain receptor binding domain, substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids in the antigen binding molecule, etc.
  • the binding activity to FcRn, particularly human FcRn before introduction of the sugar chain receptor binding domain can be changed.
  • antigen binding molecules whose binding activities are equivalent by substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids after introduction of such a sugar chain receptor binding domain are also included. It is. Methods for measuring and determining the binding activity to antigen or FcRn, particularly human FcRn, will be described later.
  • a sugar chain receptor binding domain to which a desired sugar chain is bound is preferably mentioned.
  • Preferred examples of the sugar chain include an O-linked sugar chain and an N-linked sugar chain, and a known method may be employed as a method for binding a sugar chain to a sugar chain receptor binding domain.
  • a post-translational modification in a cell-free protein synthesis system comprising preparing a cell extract from cultured cells of an immortalized mammalian cell line capable of secreting a protein, and adding mRNA encoding an antibody to the extract
  • a series of cell-free enzyme methods such as a method for producing an antibody (Japanese Patent Laid-Open No.
  • 2006-141241 can be adopted as a method for producing a sugar chain receptor binding domain to which a desired sugar chain is bound.
  • sugar chain acceptance contained in a natural or artificially produced antigen-binding molecule into which a motif sequence for adding a desired sugar chain is introduced by a recombinant gene technique or the like By introducing a gene encoding a body-binding domain into a host cell, the antigen-binding molecule of the present invention containing a sugar chain receptor-binding domain to which a desired sugar chain is bound can be produced from the culture medium of the host cell. .
  • the O-linked sugar chain can be designed by using a known database or the like for the motif sequence to which the O-linked sugar chain is added.
  • An O-linked sugar chain is added to the hinge part of IgA antibody, and a gene sequence encoding a sugar chain receptor binding domain to which such an already known O-linked sugar chain is added is a candidate motif sequence. It will be.
  • the motif sequence to which the N-linked sugar chain is added is known to be a motif in which three amino acids Asn-X-Ser / Thr are continuous.
  • the antigen-binding molecule of the present invention containing a sugar chain receptor-binding domain designed to encode Asn-X-Ser / Thr, a motif sequence that adds N-linked sugar chains by recombinant gene techniques, etc.
  • the antigen-binding molecule of the present invention containing a sugar chain receptor-binding domain to which a desired sugar chain is bound can be produced from the culture medium of the host cell.
  • the antigen-binding molecule produced as described above may have a single sugar chain structure, but may be produced as a mixture in which a plurality of sugar chains are linked. In the present invention, such a mixture can also be preferably used. In addition, an antigen-binding molecule in which a specific sugar chain is linked to its sugar chain-binding domain can also be suitably used in the present invention.
  • an antigen-binding molecule having a specific sugar chain can be obtained by utilizing the properties of a sugar chain possessed by an antigen-binding molecule artificially produced by a natural or recombinant gene technique.
  • purification is mentioned. It is known that an antibody having a high mannose sugar chain is purified using affinity chromatography using ConA-sepharose (Millward (Biologicals (2008) 36, 49-60)). Such a purification method can be used in the present invention to produce an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose non-reducing end is mannose.
  • enzyme treatment can be appropriately employed for the purpose of obtaining an antigen-binding molecule having a specific sugar chain.
  • an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose non-reducing end is galactose is converted from an antigen-binding molecule having a complex sugar chain whose non-reducing end is sialic acid by sialidase treatment.
  • sialidase treatment can be made.
  • an antibody having a high mannose type sugar chain is produced in a form in which galactose is removed from the sugar chain by treatment with sialidase and ⁇ -galactosidase (Newkirk (Clin. Exp. Immunol. (1996) 106). 259-264)).
  • Such a production method including sialidase and ⁇ -galactosidase treatment can be used for producing an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose non-reducing end is mannose in the present invention.
  • a specific sugar chain is accumulated (transgenic) by transduction with a recombinant gene encoding the antigen-binding molecule.
  • a method of recovering from the culture solution of the host cell whose glycosidase activity has been changed may be employed as appropriate.
  • a culture solution of a Lec1 mutant derived from CHO cells in which an antibody having a high mannose N-linked sugar chain lacks N-acetylglucosaminyltransferase I activity transduced with a recombinant gene encoding the antibody (Wright and Morrison (J. Exp. Med.
  • an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose non-reducing end is mannose can be recovered from a culture medium of a Lec1 mutant strain into which a recombinant gene encoding the molecule has been transduced.
  • the culture is performed by adding an inhibitor that inhibits a specific glycosidase reaction when culturing cells that produce the antigen-binding molecule.
  • a method of collecting antigen-binding molecules having specific sugar chains accumulated in the liquid can also be appropriately employed. It is known that an antibody having a high mannose N-linked sugar chain that does not have fucose at its reducing end can be recovered from the culture medium of the cell by adding kifunesine when culturing the CHO cell producing the antibody. (Zhou (Biotechnol. Bioeng. (2008) 99, 652-665)).
  • an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain that does not have fucose at its reducing end and whose non-reducing end is mannose for example, a CHO cell transduced with a recombinant gene encoding the molecule
  • the antigen-binding molecule having a specific sugar chain of the present invention can also be obtained by combining the above-described methods of adding such an inhibitor when culturing host cells with altered glycosidase activity. It is known that antibodies having a specific sugar chain are recovered by such a combination (Kanda et al. (Glycobiology (2007) 17, 104-118)), and in the present invention, an antigen-binding molecule having a specific sugar chain is obtained. For this purpose, the same combination can be appropriately adopted.
  • a method for expressing a protein having a specific sugar chain structure by genetically modifying a host such as Pichia pastoris is known (Biochemistry. 2008 Sep 30; 47 (39): 10294-304., J Biotechnol. 2009 Feb 23; 139 (4): 318-25., Nat Biotechnol. 2006 Feb; 24 (2): 210-5.)
  • a specific sugar chain structure for example, galactose, for example
  • An antigen-binding molecule in which the terminal N-type sugar chain) is uniformly bound to the N-type glycosylated sequence can be prepared.
  • the antigen-binding molecule containing the sugar chain receptor-binding domain of the present invention binds to a sugar chain receptor in a pH-dependent manner, and / or Alternatively, it has sugar chain receptor binding activity in the neutral pH range, particularly human-derived sugar chain receptor binding activity, and the sugar chain receptor binding activity in the pH neutral range is the sugar chain receptor binding activity in the acidic pH range.
  • the antigen-binding molecule promotes the uptake of the antigen into the cell by the antigen-binding molecule, and the antigen-binding molecule promotes the decrease in the antigen concentration in the plasma. It is possible to improve pharmacokinetics and increase the number of antigens that can be bound by one antigen-binding molecule.
  • binding activity to sugar chain receptor in the acidic pH range, particularly to a human sugar chain receptor, means a sugar chain receptor at pH 4.0 to pH 6.5, particularly a human. It means binding activity to the derived sugar chain receptor.
  • Glycosylation at any pH preferably between pH 5.5 and pH 6.5, such as pH 5.5, 5.6, 5.7, 5.8, 5.9, 6.0, 6.1, 6.2, 6.3, 6.4, and 6.5
  • Body in particular, binding activity to sugar chain receptors derived from humans, and particularly preferably, any pH at pH 5.8 to pH 6.0 close to the pH in the early endosome in vivo, for example, pH 5.80, Glycoceptors at a pH selected from 5.81, 5.82, 5.83, 5.84, 5.85, 5.86, 5.87, 5.88, 5.89, 5.90, 5.91, 5.92, 5.93, 5.94, 5.95, 5.96, 5.97, 5.98, 5.99, and 6.00 In particular, it means binding activity to human-derived sugar chain receptors.
  • the binding activity to a sugar chain receptor means a sugar chain receptor at pH 6.7 to pH 10.0, particularly a human-derived sugar chain. It means binding activity to the receptor.
  • the sugar chain at a pH selected from pH 7.0 to pH 8.0, for example, pH 7.0, 7.1, 7.2, 7.3, 7.4, 7.5, 7.6, 7.7, 7.8, 7.9, and 8.0
  • It means a binding activity to a receptor, particularly a human sugar chain receptor, particularly preferably a sugar chain receptor at pH 7.4 close to the pH in plasma in vivo, particularly a human sugar chain receptor. Refers to binding activity.
  • conditions other than pH for measuring the binding activity to sugar chain receptors can be appropriately selected by those skilled in the art, they are not particularly limited to specific conditions. For example, it can be measured under conditions of MES buffer and 37 ° C. as described in WO2009 / 125825.
  • the measurement of the binding activity of an antigen-binding molecule to a sugar chain receptor, particularly a human-derived sugar chain receptor can be carried out by methods known to those skilled in the art. For example, it can be measured using Biacore (GE Healthcare).
  • Measurement of the binding activity between an antigen-binding molecule and a sugar chain receptor, particularly a human-derived sugar chain receptor can be carried out, for example, on a chip on which a sugar chain receptor, particularly a human-derived sugar chain receptor molecule is immobilized. It is possible to evaluate the binding activity of an antigen-binding molecule to a sugar chain receptor, particularly a human-derived sugar chain receptor. On the other hand, by allowing a solubilized sugar chain receptor, particularly a human-derived sugar chain receptor, to flow as an analyte onto a chip on which an antigen-binding molecule is immobilized, a sugar chain receptor, particularly a human-derived molecule, is flown. The binding activity to the sugar chain receptor can be evaluated.
  • the sugar chain receptor in the acidic pH range is weaker than the antigen binding activity in the neutral pH range
  • the sugar chain receptor in the acidic pH range particularly from humans.
  • the ratio of the binding activity to the sugar chain receptor and the binding activity to the sugar chain receptor in the neutral pH range, particularly to the human sugar chain receptor is not particularly limited.
  • the ratio of KD (dissociation constant) to glycan receptors, particularly human-derived glycan receptors, at pH 5.8 and KD at pH 7.4 is KD (pH 5.8) / KD ( The value of pH 7.4) is 2 or more, more preferably the value of KD (pH 5.8) / KD (pH 7.4) is 10 or more, more preferably KD (pH 5.8) / KD (pH 7. The value of 4) is 40 or more.
  • the upper limit of the value of KD (pH 5.8) / KD (pH 7.4) is not particularly limited, and may be any value such as 400, 1000, 10000, etc., as long as it can be produced by a person skilled in the art.
  • KD dissociation constant
  • KD dissociation constant
  • Biacore GE healthcare
  • Scatchard plot flow cytometer and the like
  • the ratio of the binding activity to sugar chain receptors in the acidic pH range, particularly human-derived sugar chain receptors, and the binding activity to sugar chain receptors in the neutral pH range, particularly human-derived sugar chain receptors, is shown in the present invention.
  • k d Dissociation rate constant
  • dissociation rate constant a dissociation rate constant
  • k d dissociation rate constant
  • carbohydrate receptor in particular k d (dissociation at pH acidic region to the sugar chain receptor from human
  • k d dissociation at pH acidic region to the sugar chain receptor from human
  • the value of k d (pH acidic range) / k d (pH neutral range), which is the ratio of k d (dissociation rate constant) in the neutral pH range, is preferably 2 or more, and more preferably Is 5 or more, more preferably 10 or more, and more preferably 30 or more.
  • the upper limit of the value of k d (pH acidic range) / k d (pH neutral range) is not particularly limited, and may be set to any value such as 50, 100, 200, etc. as long as it can be produced by the technical common knowledge of those skilled in the art. obtain.
  • asialoglycoprotein receptor one of the sugar chain receptors
  • galactose is pH-dependent, showing high binding activity in the neutral pH range and low binding activity in the acidic pH range.
  • mannose receptor and mannose one of the sugar chain receptors
  • galactose / asialoglycoprotein receptor and mannose / mannose receptor can be preferably used as the sugar chain / sugar chain receptor.
  • the binding activity of galactose / asialoglycoprotein receptor and mannose / mannose receptor has not only pH dependency but also calcium ion concentration dependency. Since most sugar chain receptors are C-type lectins, the binding between sugar chain receptors and sugar chains is dependent on the calcium ion concentration. That is, like the binding of an antigen-binding molecule and an antigen, the binding between the sugar chain receptor and the sugar chain may be dependent on the calcium ion concentration, and the binding at a high calcium ion concentration is more than the binding at a low calcium ion concentration. It should be high.
  • the conditions other than pH are preferably the same.
  • the present invention is an antigen-binding molecule having an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain and one or more binding domains for a sugar chain receptor, wherein the number of binding domains for the sugar chain receptor is increased. And an antigen-binding molecule further comprising an antigen-binding domain whose binding activity to the antigen in the acidic pH range is lower than the binding activity to the antigen in the neutral pH range.
  • the present invention also provides a method for producing the antigen-binding molecule and a pharmaceutical composition containing the antigen-binding molecule.
  • the present invention provides the antigen-binding molecule and / or the antigen to which the antigen-binding molecule binds, which comprises contacting the antigen-binding molecule with a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro.
  • a method for taking in a method for increasing the number of antigens to which the antigen-binding molecule binds per molecule, a method for reducing the antigen present outside the cell, a method for improving the pharmacokinetics of the antigen-binding molecule, and the method
  • a method of promoting dissociation of an antigen from an antigen binding molecule is provided.
  • the present invention also includes an increase in the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule having an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor.
  • a method for promoting the uptake of the antigen-binding molecule and / or the antigen to which the antigen-binding molecule binds into cells in vitro, or the antigen to which the antigen-binding molecule per molecule binds in vivo or in vitro A method for increasing the number of the antigen-binding molecule, a method for increasing the ability of the antigen-binding molecule to disappear in vivo or in vitro, a method for improving the pharmacokinetics of the antigen-binding molecule, and an antigen from the antigen-binding molecule
  • a method for promoting the dissociation of is provided.
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule having an antigen-binding domain, FcRn, particularly a human FcRn-binding domain and one or more sugar chain receptor-binding domains, and binding to a sugar chain receptor in a neutral pH range Activity, the binding activity with the sugar chain receptor in the acidic pH range is lower than the binding activity with the sugar chain receptor in the neutral pH range, and the antigen binding activity in the acidic pH range is the antigen binding activity in the neutral pH range.
  • a method for producing a lower antigen binding molecule is provided.
  • the present invention provides a method for producing an antigen-binding molecule that has an excellent promoting action on reducing the antigen concentration in plasma by administration of an antigen-binding molecule and has excellent pharmacokinetics. Furthermore, the present invention provides a method for producing an antigen-binding molecule that is particularly useful when used as a pharmaceutical composition.
  • the present invention provides a method for producing an antigen-binding molecule comprising the following steps; (a) providing a polypeptide sequence of an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain; (b) identifying an amino acid sequence that is a candidate sugar chain receptor binding domain motif in the polypeptide sequence; (c) designing a carbohydrate receptor binding domain motif comprising an amino acid sequence that differs from the amino acid sequence identified in (b) by at least one amino acid; (d) producing a gene encoding a polypeptide of an antigen-binding molecule containing the motif of the sugar chain receptor binding domain designed in (c), (e) A step of recovering an antigen-binding molecule from a culture solution of a host cell transformed with the gene obtained in (d).
  • steps (c) and (d) may be repeated two or more times.
  • the number of times (c) and (d) is repeated is not particularly limited, but is usually within 10 times.
  • the production method of the present invention may include a step of further processing the antigen-binding molecule obtained in (e) with an enzyme.
  • the antigen-binding domain contained in the antigen-binding molecule produced by the production method provided by the present invention can be provided by the method described in the above “antigen-binding domain”.
  • the FcRn-binding domain having an activity of binding to FcRn, particularly human FcRn, contained in the antigen-binding molecule produced by the production method provided by the present invention can be provided by the method described in the aforementioned “FcRn-binding domain”. That is, the FcRn binding domain is not particularly limited as long as it has binding activity to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic pH range, and a domain having binding activity to FcRn, particularly human FcRn, is used directly or indirectly. obtain.
  • Such domains include, for example, Fc regions of IgG immunoglobulins that have direct binding activity to FcRn, particularly human FcRn, albumin, albumin domain3, anti-human FcRn antibody, anti-human FcRn peptide, anti-human FcRn Scaffold molecule, etc.
  • FcRn Fc regions of IgG immunoglobulins that have direct binding activity to FcRn
  • human FcRn particularly human FcRn, albumin, albumin domain3, anti-human FcRn antibody, anti-human FcRn peptide, anti-human FcRn Scaffold molecule, etc.
  • molecules that bind to IgG or albumin that have binding activity to human FcRn indirectly may be mentioned.
  • such a polypeptide sequence of a domain having binding activity to FcRn, particularly human FcRn, directly or indirectly can be provided as a polypeptide sequence of an antigen-binding domain.
  • An example of a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule produced by the production method provided by the present invention is preferably a sugar chain receptor binding domain to which a desired sugar chain is bound.
  • Preferred examples of the sugar chain include an O-linked sugar chain and an N-linked sugar chain, and a known method may be employed as a method for binding a sugar chain to a sugar chain receptor binding domain.
  • a natural or artificially prepared gene sequence that adds a desired sugar chain ie, a motif of a sugar chain receptor binding domain
  • a recombinant gene technique or the like is introduced by a recombinant gene technique or the like.
  • a sugar chain receptor-binding domain to which a desired sugar chain is bound from a culture solution of the host cell by introducing a gene encoding the sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule into the host cell.
  • Antigen binding molecules of the invention can be produced.
  • the following method can be used as a step of identifying an amino acid sequence that is a candidate for a motif of a sugar chain receptor binding domain.
  • a motif sequence to which an O-linked sugar chain is added can be identified by using a known database or the like.
  • the hinge part of the antibody contains the antigen-binding molecule of the present invention, it can be identified which isotype of the antibody the hinge part is derived from. Such hinge portions can be identified as candidate motifs for the O-type sugar receptor binding domain.
  • the motif sequence that adds the N-linked sugar chain (that is, the motif of the N-type sugar chain receptor binding domain) has three amino acids Asn-X-Ser / Thr. Is known to be a continuous motif. For this reason, provided for the purpose of designing a sugar chain receptor binding domain designed to encode Asn-X-Ser / Thr, which is a motif of an N-linked sugar chain receptor binding domain by recombinant gene techniques, etc. The presence or absence of a sequence identical or similar to Asn-X-Ser / Thr in the determined polypeptide sequence can be identified.
  • a motif of a sugar chain receptor binding domain comprising an amino acid sequence that differs from the amino acid sequence identified as described above by at least one amino acid can be designed. For example, by using a known database or the like, by substituting amino acids in the polypeptide sequence that is a candidate motif sequence to which the O-linked sugar chain identified above is added. An O-linked sugar chain motif sequence can be designed. Also, when the hinge part of the antibody contains the antigen-binding molecule of the present invention and the hinge part does not contain a hinge part derived from IgA antibody, the hinge part sequence is derived from the IgA antibody. An O-linked sugar chain motif sequence can be designed by substituting this sequence.
  • the sugar chain is an N-linked sugar chain
  • a sequence identical or similar to Asn-X-Ser / Thr in the provided polypeptide sequence is not identified, By inserting an Asn-X-Ser / Thr sequence at an appropriate position, a new N-linked carbohydrate receptor binding domain motif can be added.
  • Asn-X which is a motif of the N-linked sugar chain receptor binding domain, is substituted by replacing the amino acid residue of the similar sequence of Asn-X-Ser / Thr sequence found in the provided polypeptide sequence.
  • Similar sequences can be modified to Ser / Thr sequences.
  • the antigen-binding molecule of the present invention has one or more binding domains for sugar chain receptors, particularly human sugar chain receptors.
  • the binding domain for a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor has an antigen-binding molecule that has a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor in a neutral pH range, and accepts a sugar chain in an acidic pH range. If the binding activity with the body is lower than the binding activity with the sugar chain receptor in the neutral pH range, the type and number are not particularly limited.
  • a domain having binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor can be used directly or indirectly.
  • Such a domain examples include a sugar chain having a binding activity directly to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor; an Fc domain of an IgG type immunoglobulin; a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor Examples thereof include an antibody against the anti-sugar chain receptor, particularly a binding peptide to the human sugar chain receptor;
  • the sugar chain receptor has a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor in the neutral pH range, and the sugar chain receptor has a binding activity to the sugar chain receptor in the acidic pH range.
  • a sugar chain receptor-binding domain having a lower binding activity than is preferred.
  • the domain has a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor in the neutral pH range in advance, and has a binding activity to a sugar chain receptor in the acidic pH range.
  • a sugar chain receptor-binding domain having a lower binding activity than the above, it can be used as it is.
  • the binding activity in the acidic pH range between the sugar chain receptor-binding domain having an N-linked sugar chain with a terminal galactose and the asialoglycoprotein receptor, which is a sugar chain receptor that binds to the sugar chain, is in the neutral pH range.
  • a preferable example is lower than the binding activity.
  • the binding activity in the acidic pH range between the sugar chain receptor-binding domain having an N-linked sugar chain having a mannose terminal and the mannose receptor, which is a sugar chain receptor binding to the sugar chain is also in the neutral pH range.
  • a preferable example is lower than the binding activity.
  • Sugar chain receptors in the neutral pH range especially when the sugar chain receptor binding domain has no or weak binding activity to human sugar chain receptors, by modifying amino acids in the antigen binding molecule, In particular, binding activity to human sugar chain receptors can be obtained.
  • binding to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor by modifying an amino acid in a domain having a binding activity to a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor, in the neutral pH range in advance. The activity can be enhanced.
  • the amino acid modification of the binding domain for a sugar chain receptor, particularly a human sugar chain receptor is performed by comparing the binding activity to the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, in the neutral pH range before and after the amino acid modification. Desired modifications can be found.
  • the binding activity of the sugar chain receptor binding domain to the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, in the acidic pH range is not lower than the binding activity to the sugar chain receptor, particularly the human sugar chain receptor, in the neutral pH range.
  • the binding activity with a sugar chain receptor in the acidic pH range, particularly a human sugar chain receptor has a sugar chain receptor in the neutral pH range, particularly a human sugar chain. Binding activity can be obtained that is lower than the binding activity with the receptor.
  • the amino acid modification of the binding domain for the sugar chain receptor includes the binding activity to the sugar chain receptor in the acidic pH range before and after the amino acid modification, particularly the binding activity to the human sugar chain receptor and the sugar in the neutral range.
  • the desired modification can be found by comparing the binding activity to chain receptors, particularly human sugar chain receptors.
  • the sugar chain receptor binding domain can be introduced into any part of the structure of the antigen binding molecule.
  • the site can be introduced into the antigen-binding domain as long as it does not inhibit the binding to the antigen by the antigen-binding domain, or can be introduced into other sites.
  • the sugar chain receptor-binding domain can be introduced at any site in the structure of the antigen-binding molecule as long as it does not inhibit the binding between the FcRn-binding domain of the antigen-binding molecule and FcRn, particularly human FcRn.
  • the hinge part of an IgA antibody can be a candidate amino acid sequence of a sugar chain receptor binding domain for binding an O-linked sugar chain, and an N-linked sugar chain of Asn-X-Ser / Thr is added.
  • the motif sequence can be a candidate amino acid sequence of a sugar chain receptor binding domain for binding an N-linked sugar chain.
  • An antigen-binding molecule of the present invention comprising a sugar chain receptor-binding domain to which a desired sugar chain is bound from a culture solution of a host cell as described below, into which a gene encoding an antigen-binding molecule containing such an amino acid sequence has been introduced. Can be produced.
  • the term “does not inhibit the binding of an antigen to an antigen by an antigen-binding domain” means that the antigen-binding molecule has an antigen-binding activity by introducing a sugar chain receptor-binding domain, and the antigen-binding molecule before the introduction of the sugar chain receptor-binding domain has It means that 20% or more, preferably 50% or more, more preferably 80% or more, more preferably 90% or more of the antigen binding activity is maintained.
  • the antigen-binding activity of the antigen-binding molecule is reduced by the introduction of the sugar chain receptor-binding domain, the sugar chain is replaced by one or more amino acids in the antigen-binding molecule, such as substitution, deletion, addition and / or insertion.
  • the antigen-binding activity before introduction of the receptor-binding domain can be changed to the same extent.
  • antigen binding molecules whose binding activities are equivalent by substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids after introduction of such a sugar chain receptor binding domain are also included. It is.
  • the binding to the FcRn, particularly human FcRn, by the sugar chain receptor binding domain is not inhibited. It means that 20% or more, preferably 50% or more, more preferably 80% or more, more preferably 90% or more of the binding activity to FcRn, particularly human FcRn, possessed by the antigen-binding molecule before introduction is maintained.
  • an antigen binding molecule to FcRn is reduced by introduction of a sugar chain receptor binding domain, substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids in the antigen binding molecule, etc.
  • the binding activity to FcRn, particularly human FcRn, before introduction of the sugar chain receptor binding domain can be changed.
  • antigen binding molecules whose binding activities are equivalent by substitution, deletion, addition and / or insertion of one or more amino acids after introduction of such a sugar chain receptor binding domain are also included. It is.
  • sugar chain receptor binding domain can be introduced into sites other than the antigen binding domain and the FcRn binding domain constituting the antigen binding molecule.
  • the structure of the target antigen-binding molecule in the present invention is not particularly limited, and any structure of an antigen-binding molecule can be suitably used.
  • an antigen-binding domain, a binding domain for FcRn, particularly human FcRn, and two or more sugars is an antibody.
  • a preferable example of an antigen-binding molecule having a chain receptor domain is an antibody.
  • a preferred example of the antibody of the present invention is an IgG antibody.
  • IgG antibody When an IgG antibody is used as the antibody, the type thereof is not limited, and IgG of an isotype (subclass) such as IgG1, IgG2, IgG3, IgG4 can be used.
  • the antigen-binding molecule of the present invention may contain an antibody constant region, and an amino acid mutation may be introduced into the constant region.
  • an amino acid mutation include those that increase or decrease the binding to the Fc ⁇ receptor (Proc Natl Acad Sci US A 1 (2006) 103 (11), 4005-10). It is not limited to. It is also possible to change pH-dependent binding by selecting an appropriate constant region such as an IgG2 constant region.
  • the antigen-binding molecule targeted by the present invention is an antibody
  • any animal-derived antibody such as a mouse antibody, a human antibody, a rat antibody, a rabbit antibody, a goat antibody, or a camel antibody can be used as the antibody.
  • a modified antibody having an amino acid sequence substituted such as a chimeric antibody, particularly a humanized antibody, is also preferably used.
  • Bispecific antibodies, modified antibodies obtained by binding various molecules, polypeptides containing antibody fragments, and the like can also be used.
  • a “chimeric antibody” is an antibody produced by combining sequences derived from different animals. Specific examples of the chimeric antibody include an antibody consisting of a mouse antibody heavy chain and light chain variable (V) region and a human antibody heavy chain and light chain constant (C) region.
  • V mouse antibody heavy chain and light chain variable
  • C human antibody heavy chain and light chain constant
  • Humanized antibody refers to an antibody derived from a mammal other than a human, also referred to as a reshaped human antibody, such as a complementarity determining region (CDR) of a mouse antibody. It is transplanted to. Methods for identifying CDRs are known (Kabat et al., Sequence of Proteins of Immunological Interest (1987), National Institute of Health, Bethesda, Md., Chothia et al., Nature (1989) 342, 877) . Moreover, the general gene recombination technique is also known (EP125023, WO1996 / 002576).
  • Bispecific antibody refers to an antibody having variable regions that recognize different epitopes in the same antibody molecule.
  • a bispecific antibody can be an antibody that recognizes two or more different antigens, or it can be an antibody that recognizes two or more different epitopes on the same antigen.
  • polypeptides containing antibody fragments include Fab fragments, F (ab ') 2 fragments, scFv (Nat Biotechnol. (2005) 23 (9), 1126-36) domain antibody (dAb) (WO2004 / 058821). , WO2003 / 002609), scFv-Fc (WO2005 / 037989), dAb-Fc, Fc fusion protein and the like.
  • Molecules containing the Fc region can use the Fc region as a binding domain for FcRn, particularly human FcRn. In addition, molecules in which a human FcRn binding domain is fused to these molecules can also be used.
  • a gene encoding the antigen-binding domain, FcRn-binding domain, and sugar chain receptor-binding domain designed as described above can be prepared.
  • Gene preparation methods are known and can be prepared by chemical synthesis, or can also be prepared by ligating nucleotides constituting a polynucleotide such as PCR method by enzymatic reaction in the presence of a primer as a template. .
  • the antigen-binding domain, FcRn-binding domain, and sugar chain receptor-binding domain designed as described above are obtained by expressing each domain separately in a host cell, which will be described later, and then recovering the polypeptide recovered from the culture medium. It is possible to link by a chemical reaction in the presence of a crosslinking agent.
  • Synthetic chemical linkers are commonly used for cross-linking peptides such as N-hydroxysuccinimide (NHS), disuccinimidyl suberate (DSS), bis (sulfosuccinimidyl) Suberate (BS3), dithiobis (succinimidyl propionate) (DSP), dithiobis (sulfosuccinimidyl propionate) (DTSSP), ethylene glycol bis (succinimidyl succinate) (EGS), ethylene Glycol bis (sulfosuccinimidyl succinate) (sulfo-EGS), disuccinimidyl tartrate (DST), disulfosuccinimidyl tartrate (sulfo-DST), bis [2- (succinimideoxycarbonyloxy ) Ethyl] sulfone (BSOCOES), bis [2- (sulfosuccinimidooxycarbonyloxy
  • the antigen-binding domain, FcRn-binding domain, and sugar chain receptor-binding domain designed as described above are expressed in host cells described later in such a manner that they are linked in-frame by peptide bonds. Then, it can also be obtained by recovering from the culture solution or the like.
  • the domains can be linked directly or via a linker having a specific peptide sequence.
  • any peptide linker that can be introduced by genetic engineering, or a linker disclosed in a synthetic compound linker for example, see Protein Engineering (1996) 9, (3), 299-305) is used.
  • peptide linkers are preferred in the present invention.
  • the length of the peptide linker is not particularly limited and can be appropriately selected by those skilled in the art according to the purpose.
  • the preferred length is 5 amino acids or more (the upper limit is not particularly limited, but usually 30 amino acids or less, preferably Is 20 amino acids or less), particularly preferably 15 amino acids.
  • the gene obtained by the production method of the present invention is usually carried (inserted) into an appropriate vector and introduced into a host cell.
  • the vector is not particularly limited as long as it stably holds the inserted nucleic acid.
  • the cloning vector is preferably a pBluescript vector (Stratagene), but is commercially available. A variety of vectors can be utilized.
  • an expression vector is particularly useful.
  • the expression vector is not particularly limited as long as it is a vector that expresses an antigen-binding molecule in vitro, in E.
  • coli in cultured cells, or in an individual organism, for example, pBEST vector (manufactured by Promega) for in vitro expression, PET vector (manufactured by Invitrogen) for E. coli, pME18S-FL3 vector (GenBank Accession No. AB009864) for cultured cells, pME18S vector (Mol Cell Biol. 8: 466-472 (1988)) for living organisms Are preferably used, but are not limited thereto. Insertion of the gene of the present invention into a vector can be performed by a conventional method, for example, by a ligase reaction using a restriction enzyme site (Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley & Sons). Section 11.4-11.11.
  • the host cell is not particularly limited, and various host cells can be used depending on the purpose.
  • Examples of cells for expressing an antigen-binding molecule include bacterial cells (eg, Streptococcus, Staphylococcus, E. coli, Streptomyces, Bacillus subtilis), fungal cells (eg, yeast, Aspergillus), and insect cells (eg, Drosophila).
  • S2, Spodoptera SF9 animal cells (eg, CHO, COS, HeLa, C127, 3T3, BHK, HEK293, Bowes melanoma cells) and plant cells may be exemplified.
  • Vector introduction into host cells includes, for example, calcium phosphate precipitation, electric pulse perforation (Current protocols in Molecular Biology edit. Ausubel et al. (1987) Publish. John Wiley & Sons. Section 9.1-9.9), lipofection method, micro It can be performed by a known method such as an injection method.
  • the culture of the host cell can be performed according to a known method.
  • animal cells for example, DMEM, MEM, RPMI1640, and IMDM can be used as a culture solution.
  • the cells can be cultured by culture using a medium supplemented with serum supplements such as FBS and fetal calf serum (FCS), or by culture using a serum-free medium.
  • the pH during the culture can be appropriately selected from about 6 to 8. However, the pH is not limited to this, and a different pH can be selected for each culture or according to the culture period during the culture.
  • the culture is usually carried out at about 30 to 40 ° C. for about 15 to 200 hours, and medium exchange, aeration and agitation are performed as necessary.
  • an appropriate secretion signal can be incorporated into the desired polypeptide.
  • These signals can be endogenous signals for the antigen-binding molecule of interest, or they can be heterologous signals.
  • examples of a system for producing a polypeptide in vivo include a production system using animals and a production system using plants.
  • a polypeptide encoded by the gene produced in an animal or plant cell into which the vector into which the target gene has been introduced is introduced is recovered from the body fluid or the living body.
  • the “host” in the present invention includes these animals and plants.
  • mammals and insects are used as hosts.
  • mammals goats, pigs, sheep, mice, cattle, etc. can be used (Vicki Glaser, SPECTRUM Biotechnology Applications (1993)).
  • a transgenic animal can be used as appropriate.
  • a polynucleotide encoding the antigen-binding molecule of the present invention is prepared as a fusion gene with a gene encoding a polypeptide inherently produced in milk such as goat ⁇ casein.
  • the polynucleotide fragment containing the fusion gene is then injected into a goat embryo and the embryo is implanted into a female goat.
  • the antigen-binding molecule of interest can be recovered from the milk produced by the transgenic goat born from the goat that received the embryo or its progeny.
  • hormones can be administered to the transgenic goat as appropriate (Ebert et al., Bio / Technology (1994) 12, 699-702).
  • silkworms can be used as insects that produce the antigen-binding molecules of the present invention.
  • the target antigen-binding molecule can be recovered from the body fluid of the silkworm by infecting the silkworm with a baculovirus into which a polynucleotide encoding the target antigen-binding molecule is inserted.
  • a plant when a plant is used for production of the antigen-binding molecule of the present invention, for example, tobacco can be used.
  • tobacco a plant expression vector into which a polynucleotide encoding a target antigen-binding molecule is inserted, for example, pMON 530, is introduced into a bacterium such as Agrobacterium tumefaciens.
  • Desired antigen-binding molecules can be recovered from tobacco infected with this bacterium, for example, Nicotiana tabacum leaves (Ma et al., Eur. J. Immunol. (1994) 24, 131-8 ).
  • a desired antigen-binding molecule can be recovered from a clonal cell of Lemna minor infected with the same bacteria (Cox KM et al. Nat. Biotechnol. (2006) (12), 1591-1597).
  • the sugar chain receptor binding domain contained in the antigen-binding molecule in the present invention when a sugar chain receptor binding domain to which a desired sugar chain is bound is used, the sugar chain is bound to the sugar chain receptor binding domain.
  • a known method can be adopted as the method.
  • a post-translational modification in a cell-free protein synthesis system characterized in that a cell extract is prepared from cultured cells of an immortalized mammalian cell line capable of secreting a protein, and mRNA encoding an antibody is added to the extract.
  • a series of cell-free enzyme methods such as a method for producing an antibody (Japanese Patent Laid-Open No. 2006-141241) can be adopted as a method for producing a sugar chain receptor binding domain to which a desired sugar chain is bound.
  • a step of further treating such an antigen-binding molecule with an enzyme can be included in the production method of the present invention.
  • the antigen-binding molecule produced as described above may have a single sugar chain structure, but may be produced as a mixture in which a plurality of sugar chains are linked. In the present invention, such a mixture can also be preferably used. In addition, an antigen-binding molecule in which a specific sugar chain is linked to its sugar chain-binding domain can also be suitably used in the present invention.
  • a plurality of known methods can be adopted as a method of linking a specific sugar chain to the sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in the present invention.
  • Examples include a method of purifying an antigen-binding molecule having a specific sugar chain by utilizing the property of the sugar chain possessed by an antigen-binding molecule artificially produced by a regenerative gene technique or the like. It is known that an antibody having a high mannose sugar chain is purified using affinity chromatography using ConA-sepharose (Millward (Biologicals (2008) 36, 49-60)). Such a purification method can be used in the present invention to produce an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose non-reducing end is mannose.
  • an appropriate protein-modifying enzyme is allowed to act before or after purification of the antigen-binding molecule, so that modifications can be arbitrarily added and partially or comprehensively modified molecules such as peptides can be removed.
  • the protein modifying enzyme include trypsin, chymotrypsin, lysyl endopeptidase, protein kinase, glucosidase and the like.
  • a step of further treating such an antigen-binding molecule with an enzyme can be included in the production method of the present invention.
  • a plurality of known methods can be employed as a method for linking a specific sugar chain to the sugar chain receptor binding domain contained in the antigen-binding molecule in the present invention.
  • Enzyme treatment can also be employed as appropriate.
  • an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain having a terminal galactose can be produced from an antigen-binding molecule having a complex type sugar chain having a terminal sialic acid by sialidase treatment.
  • an antibody having a high mannose type sugar chain is produced in a form in which galactose is removed from the sugar chain by treatment with sialidase and ⁇ -galactosidase (Newkirk (Clin. Exp. Immunol. (1996) 106). 259-264)).
  • sialidase and ⁇ -galactosidase can be used in the present invention to produce an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose terminal is mannose.
  • a step of further treating such an antigen-binding molecule with an enzyme can be included in the production method of the present invention.
  • the antigen-binding molecule of the present invention containing a sugar chain receptor-binding domain to which a desired sugar chain is bound can be produced from the culture medium of the host cell.
  • a specific sugar chain is accumulated (transgenic) by transduction with a recombinant gene encoding the antigen-binding molecule.
  • a method of recovering from the culture solution of the host cell whose glycosidase activity has been changed may be employed as appropriate.
  • a culture solution of a Lec1 mutant derived from CHO cells in which an antibody having a high mannose N-linked sugar chain lacks N-acetylglucosaminyltransferase I activity transduced with a recombinant gene encoding the antibody (Wright and Morrison (J. Exp. Med.
  • an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain whose non-reducing end is mannose can be recovered from a culture medium of a Lec1 mutant strain into which a recombinant gene encoding the molecule has been transduced.
  • the culture is performed by adding an inhibitor that inhibits a specific glycosidase reaction when culturing cells that produce the antigen-binding molecule.
  • a method of collecting antigen-binding molecules having specific sugar chains accumulated in the liquid can also be appropriately employed. It is known that an antibody having a high mannose-type N-linked sugar chain without fucose is recovered from the culture medium of the cell by adding kifunesine during the culture of the CHO cell producing the antibody ( Zhou (Biotechnol. Bioeng. (2008) 99, 652-665)).
  • an antigen-binding molecule having an N-linked sugar chain having no fucose and having a mannose terminal is cultured, for example, by adding kifunesine to a CHO cell transduced with a recombinant gene encoding the molecule. Can be recovered from the culture.
  • the antigen-binding molecule having a specific sugar chain of the present invention can also be obtained by combining the above-described methods of adding such an inhibitor when culturing host cells with altered glycosidase activity. It is known that antibodies having a specific sugar chain are recovered by such a combination (Kanda et al. (Glycobiology (2007) 17, 104-118)), and in the present invention, an antigen-binding molecule having a specific sugar chain is obtained. For this purpose, the same combination can be appropriately adopted.
  • the antigen-binding molecule produced as described above may have a single sugar chain structure, but may be produced as a mixture in which a plurality of sugar chains are linked. In the present invention, such a mixture can also be preferably used. In addition, an antigen-binding molecule in which a specific sugar chain is linked to its sugar chain-binding domain can also be suitably used in the present invention.
  • the antigen-binding molecule thus obtained can be isolated from inside or outside the host cell (medium, milk, etc.) and purified as a substantially pure and uniform antigen-binding molecule.
  • Separation and purification methods used for the separation and purification of antigen-binding molecules are appropriately selected from the separation and purification methods used in normal polypeptide purification according to the purpose. However, it is not limited to a specific method. For example, chromatography column, filter, ultrafiltration, salting out, solvent precipitation, solvent extraction, distillation, immunoprecipitation, SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, isoelectric focusing, dialysis, recrystallization, etc. are appropriately selected, In combination, antigen-binding molecules can be separated and purified.
  • chromatography examples include affinity chromatography, ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography, gel filtration, reverse phase chromatography, and adsorption chromatography (Strategies for Protein Purification and Characterization: A Laboratory Course Manual. Ed Daniel R. Marshak et al. (1996) Cold Spring Harbor Laboratory Press). These chromatography can be performed using liquid phase chromatography, for example, liquid phase chromatography such as HPLC and FPLC.
  • Columns used for affinity chromatography include protein A columns and protein G columns. Examples of the column using protein A include Hyper D, POROS, Sepharose F. F. (Pharmacia), and the like.
  • the antigen-binding molecule prepared as described above has desired properties in terms of antigen-binding activity, FcRn, particularly binding activity to human FcRn, and sugar receptor binding activity is described above.
  • Antigen-binding activity, FcRn binding activity, or sugar chain receptor binding activity is described above.
  • a step of designing a carbohydrate receptor binding domain motif and a step of producing a gene encoding a polypeptide of an antigen binding molecule containing the carbohydrate receptor binding domain motif are further included. By repeating the process more than once, an antigen-binding molecule having a desired property is produced.
  • the antigen-binding molecule containing the sugar chain receptor-binding domain of the present invention binds to a sugar chain receptor in a pH-dependent manner, and / or Alternatively, it has sugar chain receptor binding activity in the neutral pH range, particularly human-derived sugar chain receptor binding activity, and the sugar chain receptor binding activity in the pH neutral range is the sugar chain receptor binding activity in the acidic pH range.
  • the antigen-binding molecule promotes the uptake of the antigen into the cell by the antigen-binding molecule, and the antigen-binding molecule promotes the decrease in the antigen concentration in the plasma. It is possible to improve pharmacokinetics and increase the number of antigens that can be bound by one antigen-binding molecule.
  • the antigen-binding molecule produced by the production method of the present invention is an antigen-binding molecule that promotes a decrease in the antigen concentration in plasma by its administration. Therefore, the production method of the present invention can be used as a method for producing an antigen-binding molecule that promotes a decrease in the antigen concentration in plasma by its administration.
  • the antigen-binding molecule produced by the production method of the present invention is an antigen-binding molecule with improved pharmacokinetics. Therefore, the production method of the present invention can be used as a method for producing an antigen-binding molecule with improved pharmacokinetics.
  • the antigen-binding molecule produced by the production method is considered to be capable of increasing the number of antigens that can be bound by one antigen-binding molecule when administered to animals such as humans, mice, monkeys, etc. . Therefore, the production method of the present invention can be used as a method for producing an antigen-binding molecule in which the number of antigens that can be bound by one antigen-binding molecule is increased.
  • the antigen-binding molecule produced by the production method of the present invention dissociates an antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule when administered to an animal such as a human, mouse, monkey or the like. It is considered possible. Therefore, the production method of the present invention can be used as a method for producing an antigen-binding molecule capable of dissociating an extracellularly bound antigen inside a cell.
  • the antigen-binding molecule produced by the production method of the present invention binds to an antigen-binding molecule incorporated into the cell in a state of being bound to the antigen when administered to animals such as humans, mice and monkeys. It is thought that it can be released outside the cell in a state where it is not. Therefore, the production method of the present invention can be used as a method for producing an antigen-binding molecule that is taken into a cell in a state of being bound to an antigen and released to the outside of the cell without being bound to an antigen.
  • these antigen-binding molecules are considered to be particularly excellent as pharmaceuticals because they have a higher action of lowering the antigen concentration in plasma when administered compared to normal antigen-binding molecules. Therefore, the production method of the present invention can be used as a method for producing an antigen-binding molecule for use as a pharmaceutical composition.
  • the pharmaceutical composition or the present invention also relates to a pharmaceutical composition comprising the antigen-binding molecule of the present invention or the antigen-binding molecule produced by the production method of the present invention.
  • the antigen-binding molecule of the present invention or the antigen-binding molecule produced by the production method of the present invention is useful as a pharmaceutical composition because its action reduces the antigen concentration in plasma compared to normal antigen-binding molecules. It is.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain a pharmaceutically acceptable carrier.
  • the pharmaceutical composition usually refers to a drug for treatment or prevention of a disease, or examination / diagnosis.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be formulated by methods known to those skilled in the art.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be used parenterally in the form of a sterile solution with water or other pharmaceutically acceptable liquid, or an injection of a suspension.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is a pharmacologically acceptable carrier or medium, specifically, sterile water or physiological saline, vegetable oil, emulsifier, suspension agent, surfactant, stabilizer, flavoring agent, It is formulated by admixing with excipients, vehicles, preservatives, binders, etc. as appropriate in admixture in unit dosage forms generally required for accepted pharmaceutical practice. The amount of the active ingredient in these preparations is set so as to obtain an appropriate volume within the indicated range.
  • a sterile composition for injection can be formulated in accordance with normal pharmaceutical practice using a vehicle such as distilled water for injection.
  • a vehicle such as distilled water for injection.
  • the aqueous solution for injection include isotonic solutions containing physiological saline, glucose and other adjuvants (for example, D-sorbitol, D-mannose, D-mannitol, sodium chloride).
  • a suitable solubilizer such as alcohol (ethanol, etc.), polyalcohol (propylene glycol, polyethylene glycol, etc.), nonionic surfactant (polysorbate 80 (TM), HCO-50, etc.) may be used in combination.
  • oily liquid examples include sesame oil and soybean oil, and benzyl benzoate and / or benzyl alcohol can be used in combination as a solubilizing agent. It can also be formulated with buffers (eg, phosphate buffer and sodium acetate buffer), soothing agents (eg, procaine hydrochloride), stabilizers (eg, benzyl alcohol and phenol), and antioxidants.
  • buffers eg, phosphate buffer and sodium acetate buffer
  • soothing agents eg, procaine hydrochloride
  • stabilizers eg, benzyl alcohol and phenol
  • antioxidants antioxidants.
  • the prepared injection solution is usually filled in a suitable ampoule.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is preferably administered by parenteral administration.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be prepared as an injection, nasal, pulmonary, or transdermal composition.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be administered systemically or locally by intravenous injection, intramuscular injection, intraperitoneal injection, subcutaneous injection, and the like.
  • the administration method of the pharmaceutical composition of the present invention can be appropriately selected depending on the age and symptoms of the patient.
  • the dosage of the pharmaceutical composition containing the antigen-binding molecule can be set, for example, in the range of 0.0001 mg to 1000 mg per kg of body weight per time.
  • the dose may be set in the range of 0.001 to 100000 mg per patient, but the dose of the pharmaceutical composition of the present invention is not necessarily limited to these values.
  • the dose and administration method vary depending on the weight, age, symptoms, etc. of the patient, but those skilled in the art can set an appropriate dose and administration method in consideration of these conditions.
  • amino acids contained in the amino acid sequences described in the present invention are modified after translation (for example, modification to pyroglutamic acid by pyroglutamylation of N-terminal glutamine is a modification well known to those skilled in the art).
  • antigen-binding molecules whose amino acids are post-translationally modified are also included in the scope of antigen-binding molecules specified by the amino acid sequences described in the present invention.
  • a method for promoting the uptake of an antigen-binding molecule or an antigen that binds to the antigen-binding molecule into a cell comprising contacting a cell that expresses a sugar chain receptor in vivo or in vitro.
  • Provided is a method for promoting the uptake of a binding molecule or an antigen that binds to the antigen-binding molecule into the cell.
  • uptake into cells means that an antigen-binding molecule or an antigen that binds to the antigen-binding molecule is taken into the cell by endocytosis.
  • promoting uptake into cells means that the rate at which an antigen-binding molecule that binds to an antigen outside the cell is taken up into the cell is promoted. Therefore, in the present invention, whether or not the antigen-binding molecule or the antigen binding to the antigen-binding molecule is promoted into the cell is determined by whether the antigen-binding molecule or the antigen binding to the antigen-binding molecule is taken into the cell. It can be determined by whether or not the loading speed has increased.
  • the rate of antigen uptake into cells can be determined, for example, by adding an antigen-binding molecule and an antigen to a culture solution containing sugar chain receptor-expressing cells and It can be calculated by measuring the decrease over time, or by measuring the amount of antigen-binding molecule taken into the sugar chain receptor-expressing cell or the antigen-binding molecule over time. .
  • Contact between a cell expressing a sugar chain receptor and an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule can be performed in vitro as described above, or in vivo by administering an antigen-binding molecule. Can be broken.
  • the present invention provides an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule in a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo or in vitro.
  • a method for accelerating the rate of uptake of an antigen-binding molecule or an antigen that binds to the antigen-binding molecule into cells for example, (1) plasma comprising an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule
  • An antigen-binding molecule that does not bind an antigen after it has been taken out of the body and contacted with a cell that expresses a sugar chain receptor and recycled outside the cell after a certain period of time also referred to as re-secretion or recirculation
  • the rate of disappearance of antigens in plasma can be promoted by the so-called ex vivo method of returning the contained plasma to the living body, or (2) the method of administering the antigen-binding molecule into the living body.
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time.
  • a method of returning to the body can also be used. Therefore, whether the antigen-binding molecule or antigen binding to the antigen-binding molecule has been taken up into the cell is determined, for example, by the rate of disappearance of the antigen present in plasma when the antigen-binding molecule is not administered. It can also be confirmed by measuring whether it is accelerated or if the antigen concentration in plasma is reduced by the ex vivo method or administration of an antigen-binding molecule.
  • Whether or not the uptake is promoted is determined by the disappearance rate of the antigen in plasma confirmed in the above (1) and (2), in which human natural IgG, particularly human natural IgG1 is used instead of the antigen-binding molecule. It can also be confirmed by confirming whether or not the rate of disappearance of the antigen in plasma is confirmed by the method using the above.
  • the present invention is further applied to a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in an antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain whose antigen-binding activity changes depending on ion concentration conditions.
  • a method is provided for facilitating uptake of an antigen that binds to an antigen-binding molecule into a cell, comprising contacting in vivo or in vitro.
  • the present invention provides a cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in an antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain whose antigen-binding activity has been changed according to the condition of ion concentration in vivo or Provided is a method for facilitating uptake of an antigen that binds to an antigen-binding molecule into a cell, comprising contacting in vitro.
  • the present invention relates to a sugar chain receptor-binding domain contained in an antigen-binding molecule, wherein at least one amino acid of the antigen-binding domain is an amino acid whose binding activity of the antigen-binding domain to the antigen varies depending on a calcium ion concentration condition or pH condition.
  • a method for promoting the uptake of an antigen that binds to an antigen-binding molecule into a cell which comprises contacting a cell that expresses a sugar chain receptor that binds to an in vivo or in vitro cell.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vitro as well as in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor.
  • Contacting an antigen-binding molecule with this includes administering the antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • a method for increasing the number of antigens bound by an antigen-binding molecule per molecule including contacting a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro. Bringing an antigen-binding molecule having one or more sugar chain receptor-binding domains into contact with a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo or in vitro.
  • a method for increasing the number of antigens bound by an antigen-binding molecule per molecule is provided.
  • the number of antigens to which an antigen-binding molecule binds per molecule means the number of antigens that can be bound before the antigen-binding molecule is degraded and disappears.
  • “increasing the number of antigens that can be bound by an antigen-binding molecule per molecule” means increasing the number of times that an antigen molecule bound to the antigen-binding molecule dissociates and binds to the antigen molecule again.
  • the antigen molecule that binds to the antigen-binding molecule can be the same antigen molecule present in the reaction system in which both molecules exist, or can be a different molecule.
  • an antigen-binding molecule bound to an antigen is assumed to be one cycle in which the antigen-binding molecule returns to the outside of the cell after the antigen-binding molecule bound to the antigen is taken into the cell and dissociates the antigen in the endosome. When this is done, the number of cycles that can be rotated before the antigen-binding molecule is degraded and disappears is increased.
  • the antigen-binding molecule of the present invention having binding activity to a sugar chain receptor in the neutral pH range is bound to the sugar chain receptor and then taken up into the cell of the cell expressing the sugar chain receptor by endocytosis. .
  • the antigen-binding molecule of the present invention released from the sugar chain receptor in the acidic region is recycled again to the outside of the cell by binding to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic region.
  • FcRn particularly human FcRn
  • the antigen-binding molecule of the present invention that is recycled to the outside of the cell after the antigen is dissociated from the antigen-binding molecule in the acidic region can bind to the antigen again. Therefore, whether or not the number of cycles has increased can be determined by whether or not “promoting uptake into cells” is described above, or whether or not “pharmacokinetics” described later is improved.
  • the present invention provides an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule in a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo or in vitro.
  • a method for increasing the number of antigens bound by an antigen-binding molecule per molecule including, for example, (1) removing the antigen-binding molecule and plasma containing the antigen-binding molecule once in vitro.
  • plasma containing an antigen-binding molecule that does not bind to the antigen is returned to the living body after contact with a cell that expresses the sugar chain receptor and recycled outside the cell after a certain period of time (also called re-secretion or recirculation).
  • the rate of disappearance of the antigen in plasma can be promoted by the so-called ex vivo method or (2) the method of administering the antigen-binding molecule in vivo.
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time.
  • a method of returning to the body can also be used.
  • the present invention further provides a glycan acceptor comprising an antigen-binding molecule whose antigen-binding molecule has an increased number of antigens that can bind to one antigen-binding molecule, and whose antigen-binding activity is changed depending on ion concentration conditions.
  • a method for increasing the number of antigens that can be bound by a single antigen-binding molecule which comprises contacting a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a body-binding domain in vivo or in vitro.
  • the present invention includes an antigen-binding molecule containing an antigen-binding molecule in which the number of antigens that can be bound by one molecule of the antigen-binding molecule is increased.
  • a method for increasing the number of antigens that can be bound by a single antigen-binding molecule comprising contacting a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain in vivo or in vitro.
  • the present invention is such that at least one amino acid of the antigen binding domain is an amino acid whose binding activity to the antigen varies depending on the calcium ion concentration condition or pH condition, and the number of antigens that can be bound by one antigen binding molecule increases.
  • Binding with a single antigen-binding molecule including in vivo or in vitro contact with a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule.
  • a method of increasing the number of antigens to be provided is provided.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vitro as well as in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor.
  • Contacting an antigen-binding molecule with this includes administering the antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • a method for reducing an antigen existing outside a cell comprising contacting a cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro, and the present invention comprises an antigen binding domain, an FcRn binding domain, and one or more sugar chain receptors
  • An antigen binding molecule having a binding domain is present outside a cell, including contacting a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in the antigen binding molecule in vivo or in vitro.
  • the antigen present outside the cell means an antigen present outside the cell expressing the sugar chain receptor.
  • antigens that are present outside the cell such as blood, plasma, serum, urine, lymph, saliva, tears, and other body fluids are present outside the cell. It can be illustrated as an example.
  • the antigen-binding molecule of the present invention administered to a living body is not limited to the antigen present in these body fluids as long as it can bind outside the cell expressing the sugar chain receptor.
  • an antigen present in plasma is preferred.
  • an antigen present in the fluid can be exemplified as an example of an antigen present outside the cell.
  • the antigen-binding molecule of the present invention having binding activity to a sugar chain receptor in the neutral pH range is bound to the sugar chain receptor and then taken up into the cell of the cell expressing the sugar chain receptor by endocytosis. .
  • the antigen-binding molecule of the present invention released from the sugar chain receptor in the acidic region is recycled again to the outside of the cell by binding to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic region.
  • FcRn particularly human FcRn
  • the antigen-binding molecule of the present invention that is recycled to the outside of the cell after the antigen is dissociated from the antigen-binding molecule in the acidic region can bind to the antigen again. In this case, the dissociated antigen undergoes degradation in intracellular lysosomes.
  • the antigen existing outside the cell expressing the sugar chain receptor bound to the antigen-binding molecule of the present invention is degraded by the lysosome inside the cell expressing the sugar chain receptor. Is done. As a result of such degradation of the antigen, it is considered that the antigen present outside the cell decreases.
  • body fluid such as blood, plasma, serum, urine, lymph, saliva, tears, etc. Blood, plasma, serum, urine, and lymph fluid removed from the living body, by measuring the amount of antigen present outside the cell, and when cells expressing sugar chain receptors are present outside the body. It can be evaluated by measuring the amount of antigen present in the culture solution for culturing the cells, in addition to body fluids such as fluid and tears.
  • the present invention provides an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule in a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo or in vitro.
  • a method for reducing an antigen present outside a cell comprising: (1) removing a plasma containing an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule once in vitro, The so-called ex vivo method of returning plasma containing an antigen-binding molecule that does not bind an antigen, which is brought into contact with an expressing cell and then recycled outside the cell after a certain period of time (also referred to as re-secretion or recirculation), or (2) The antigen present outside the cell can be reduced by the method of administering the antigen-binding molecule in vivo.
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time.
  • a method of returning to the body can also be used. Therefore, whether or not the antigen present outside the cell has decreased is, for example, whether or not the amount of antigen present in plasma is decreased compared to the case where the antigen-binding molecule is not administered, or the ex vivo method. Alternatively, it can be confirmed by measuring whether the antigen concentration in plasma is reduced by administration of the antigen-binding molecule.
  • whether or not the amount of antigen in plasma is decreased depends on whether the rate of disappearance of the antigen in plasma confirmed in the above (1) and (2) is human natural IgG in place of the antigen-binding molecule. It can also be confirmed by confirming whether or not the rate of disappearance of the antigen in plasma is confirmed by the method using human natural IgG1.
  • the present invention provides a sugar chain receptor that binds the antigen-binding molecule of the present invention comprising an antigen-binding domain whose binding activity to an antigen varies depending on ion concentration conditions to the sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule.
  • a method for reducing an antigen present outside a cell which comprises contacting the cell expressing the cell in vivo or in vitro.
  • the present invention relates to a sugar chain acceptor that binds the antigen-binding molecule of the present invention, which includes an antigen-binding domain whose binding activity to an antigen is changed depending on ion concentration conditions, to the sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule.
  • the present invention is an amino acid in which at least one amino acid of the antigen binding domain is an amino acid whose binding activity to an antigen varies depending on a calcium ion concentration condition or pH condition, and the antigen binding molecule of the present invention is a saccharide contained in the antigen binding molecule.
  • a method for reducing an antigen present outside a cell which comprises contacting a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a chain receptor binding domain in vivo or in vitro.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vitro as well as in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor.
  • Contacting an antigen-binding molecule with this includes administering the antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • a method for improving the pharmacokinetics of an antigen-binding molecule comprising contacting a cell expressing a sugar chain receptor in vivo.
  • the present invention also relates to an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain, and two or more sugar chain receptor-binding domains. Improving the pharmacokinetics of an antigen-binding molecule, which comprises contacting an antigen-binding molecule having an antigen-binding molecule with a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo.
  • a method comprising contacting a cell expressing a sugar chain receptor in vivo.
  • “improvement of pharmacokinetics”, “improvement of pharmacokinetics” or “excellent pharmacokinetics” means “improvement of plasma (blood) retention”, “improvement of plasma (blood) retention” ”,“ Excellent plasma (blood) retention ”,“ prolonging plasma (blood) retention ”, and these terms are used interchangeably.
  • the pharmacokinetics is improved means that an antigen-binding molecule is administered to an animal such as a human, mouse, rat, monkey, rabbit, or dog until it disappears from plasma (for example, it is degraded intracellularly).
  • the time until the antigen-binding molecule cannot be returned to the plasma is increased, and the time between the administration of the antigen-binding molecule and its disappearance It also includes a longer residence time in plasma in a state capable of binding to an antigen (for example, a state where an antigen-binding molecule is not bound to an antigen).
  • an antigen-binding molecule not bound to an antigen includes a longer time until an antigen-binding molecule not bound to an antigen (antigen-unbound antigen-binding molecule) is decomposed and disappears. Even if the antigen-binding molecule is present in plasma, if the antigen is already bound to the antigen-binding molecule, the antigen-binding molecule cannot bind to a new antigen. Therefore, if the time during which the antigen-binding molecule is not bound to the antigen becomes longer, the time for binding to the new antigen becomes longer (the opportunity for binding to the new antigen increases), and the antigen binds to the antigen-binding molecule in vivo.
  • the time during which the antigen is not bound can be reduced, and the time during which the antigen is bound to the antigen-binding molecule can be lengthened. If the disappearance of the antigen from the plasma can be accelerated by administration of the antigen-binding molecule, the plasma concentration of the non-antigen-binding antigen-binding molecule increases, and the time that the antigen is bound to the antigen-binding molecule is long. Become.
  • “improvement of pharmacokinetics of antigen-binding molecule” means improvement of pharmacokinetic parameters of any non-antigen-binding antigen-binding molecule (increase in plasma half-life, increase in mean plasma residence time, Either a decrease in plasma clearance), or an increase in the time during which the antigen is bound to the antigen-binding molecule after administration of the antigen-binding molecule, or accelerated disappearance of the antigen from the plasma by the antigen-binding molecule, including.
  • Judgment by measuring any of the parameters of the antigen-binding molecule or non-antigen-binding antigen-binding molecule such as plasma half-life, mean plasma residence time, and plasma clearance (pharmacokinetics, understanding through exercises (Nanzan Hall)) Is possible.
  • plasma half-life a parameter that is administered to mice, rats, monkeys, rabbits, dogs, humans, etc.
  • plasma clearance pharmacokinetics, understanding through exercises (Nanzan Hall)
  • the phrase “improves pharmacokinetics” includes extending the time for which an antigen is bound to an antigen-binding molecule after administration of the antigen-binding molecule. Whether or not the time during which the antigen is bound to the antigen-binding molecule is prolonged after administration of the antigen-binding molecule is determined by measuring the plasma concentration of the antigen-binding molecule that is not bound to the antigen-binding molecule, The determination can be made based on the plasma concentration of the unbound antigen or the time until the ratio of the antigen-bound molecule unbound antigen concentration to the total antigen concentration increases.
  • the plasma concentration of the antigen-binding molecule non-binding antigen or the ratio of the antigen-binding molecule non-binding antigen concentration to the total antigen concentration can be carried out by methods known to those skilled in the art. For example, Pharm Res. (2006 ) 23 (1) The method measured in 95-103 can be used.
  • an antigen exhibits some function in vivo
  • whether the antigen is bound to an antigen-binding molecule (antagonist molecule) that neutralizes the function of the antigen is evaluated based on whether the function of the antigen is neutralized. It is also possible to do. Whether the antigen function is neutralized can be evaluated by measuring some in vivo marker that reflects the antigen function.
  • Whether an antigen is bound to an antigen-binding molecule (agonist molecule) that activates the function of the antigen can be evaluated by measuring some in vivo marker that reflects the function of the antigen.
  • Measurement of plasma concentration of unbound antigen, measurement of ratio of unbound antigen amount to total antigen amount, measurement of in vivo marker, etc. are not particularly limited, but constant after administration of antigen binding molecule It is preferably performed after a lapse of time.
  • the time after a fixed time has elapsed since the administration of the antigen-binding molecule is not particularly limited, and can be determined by a person skilled in the art according to the nature of the administered antigen-binding molecule. 1 day after administration of the molecule, 3 days after administration of the antigen binding molecule, 7 days after administration of the antigen binding molecule, 14 days after administration of the antigen binding molecule, For example, 28 days after the administration.
  • mice eg, normal mice, human antigen-expressing transgenic mice, transgenic mice expressing human FcRn, 32 or 276 strains (Jackson Laboratories)
  • Transgenic mice such as Methods Mol Biol. (2010) 602, 93-104, etc.
  • plasma retention in monkeys eg, cynomolgus monkeys, etc.
  • the present invention further provides pharmacokinetics of an antigen-binding molecule comprising administering to the living body an antigen-binding molecule having improved pharmacokinetics, which comprises an antigen-binding domain whose antigen-binding activity changes depending on ion concentration conditions. Provide a way to improve. Furthermore, the present invention relates to the pharmacokinetics of an antigen-binding molecule comprising administering to a living body an antigen-binding molecule having improved pharmacokinetics, which comprises an antigen-binding domain whose antigen-binding activity is changed depending on ion concentration conditions. Provide a way to improve.
  • the present invention provides an antigen-binding molecule having improved pharmacokinetics in vivo, wherein at least one amino acid of the antigen-binding domain is an amino acid whose binding activity to the antigen varies depending on calcium ion concentration conditions or pH conditions.
  • a method is provided for improving the pharmacokinetics of an antigen binding molecule comprising administering.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • a method for promoting dissociation of an antigen from an antigen-binding molecule in a cell including contacting the cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro.
  • the present invention further comprises an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain, Bringing an antigen-binding molecule having one or more sugar chain receptor-binding domains into contact with a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo or in vitro
  • a method for promoting dissociation of the antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule in the cell including contacting the cell expressing a sugar chain receptor in vivo or in vitro.
  • the location where the antigen dissociates from the antigen-binding molecule may be any location within the cell, but is preferably in the early endosome.
  • “dissociation of an antigen bound to an antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule within the cell” means that the antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell contains a saccharide contained in the antigen-binding molecule.
  • the antigen-binding molecule of the present invention having binding activity to a sugar chain receptor in the neutral pH range is bound to the sugar chain receptor and then taken up into the cell of the cell expressing the sugar chain receptor by endocytosis. .
  • the antigen-binding molecule of the present invention released from the sugar chain receptor in the acidic region is recycled again to the outside of the cell by binding to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic region.
  • FcRn particularly human FcRn
  • the antigen-binding molecule of the present invention that is recycled to the outside of the cell after the antigen is dissociated from the antigen-binding molecule in the acidic region can bind to the antigen again. In this case, the dissociated antigen undergoes degradation in intracellular lysosomes.
  • the antigen existing outside the cell expressing the sugar chain receptor bound to the antigen-binding molecule of the present invention is degraded by the lysosome inside the cell expressing the sugar chain receptor. Is done. As a result of such degradation of the antigen, it is considered that the antigen present outside the cell decreases.
  • body fluid such as blood, plasma, serum, urine, lymph, saliva, tears, etc. Blood, plasma, serum, urine, and lymph fluid removed from the living body, by measuring the amount of antigen present outside the cell, and when cells expressing sugar chain receptors are present outside the body. It can be evaluated by measuring the amount of antigen present in the culture solution for culturing the cells, in addition to body fluids such as fluid and tears.
  • the present invention provides an antigen-binding molecule and an antigen that binds to the antigen-binding molecule in a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule in vivo or in vitro.
  • a method for promoting dissociation of an antigen bound to an antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule in the cell for example, (1) binding to the antigen-binding molecule and the antigen-binding molecule.
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time.
  • a method of returning to the body can also be used.
  • whether or not the antigen present outside the cell has decreased is, for example, whether or not the amount of antigen present in plasma is decreased compared to the case where the antigen-binding molecule is not administered, or the ex vivo method. Alternatively, it can be confirmed by measuring whether the antigen concentration in plasma is reduced by administration of the antigen-binding molecule.
  • whether or not the amount of antigen in plasma is decreased depends on whether the rate of disappearance of the antigen in plasma confirmed in the above (1) and (2) is human natural IgG in place of the antigen-binding molecule. It can also be confirmed by confirming whether or not the rate of disappearance of the antigen in plasma is confirmed by the method using human natural IgG1.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor is bound to the antigen-binding molecule.
  • Contacting includes administering an antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • the present invention provides an antigen-binding molecule of the present invention comprising an antigen-binding domain whose binding activity to an antigen varies depending on ion concentration conditions, and a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule.
  • a method of promoting dissociation of an antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule in the cell which comprises contacting the cell with an expression.
  • the present invention provides a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor-binding domain contained in the antigen-binding molecule of the present invention, which contains an antigen-binding domain whose antigen-binding activity is changed depending on the condition of ion concentration.
  • a method of promoting dissociation of an antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule in the cell is provided.
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, wherein at least one amino acid of the antigen-binding domain is an amino acid whose binding activity of the antigen-binding domain to the antigen varies depending on a calcium ion concentration condition or pH condition.
  • the antigen binding in the cell of the antigen bound to the antigen binding molecule outside the cell comprising contacting a cell expressing a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in the molecule
  • a method for promoting dissociation from a molecule is provided.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain, and two or more binding domains for a sugar chain receptor.
  • Incorporation of antigen-binding molecules or antigen-binding antigens into cells of cells expressing the sugar chain receptor in vivo or in vitro, including increasing the number of binding domains for the sugar chain receptor Provide a way to promote.
  • uptake into cells means that an antigen-binding molecule or an antigen that binds to the antigen-binding molecule is taken into the cell by endocytosis.
  • promoting uptake into cells means that the rate at which an antigen-binding molecule that binds to an antigen outside the cell (an antigen that binds to an antigen-binding molecule) is taken into the cell is promoted. means. Therefore, in the present invention, whether or not the antigen-binding molecule or the antigen binding to the antigen-binding molecule is promoted into the cell is determined by whether the antigen-binding molecule or the antigen binding to the antigen-binding molecule is taken into the cell.
  • the rate of antigen uptake into cells can be determined, for example, by adding an antigen-binding molecule and an antigen to a culture solution containing sugar chain receptor-expressing cells and It can be calculated by measuring the decrease over time, or by measuring the amount of antigen-binding molecule taken into the sugar chain receptor-expressing cell or the antigen-binding molecule over time. .
  • the method of “increasing the number of binding domains for a sugar chain receptor” includes one or more of the methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification. Combinations can be used as appropriate.
  • Incorporation of the antigen-binding molecule of the present invention into a cell expressing a sugar chain receptor can be performed in vitro or in vivo by administering the antigen-binding molecule. That is, in the present invention, whether or not the antigen-binding molecule or the antigen binding to the antigen-binding molecule is promoted into the cell includes, for example, (1) an antigen-binding molecule and an antigen binding to the antigen-binding molecule.
  • An antigen-binding molecule that does not bind antigen after it has been removed from the body and then brought into contact with cells expressing the sugar chain receptor and recycled outside the cell after a certain period of time (also called re-secretion or recirculation)
  • the so-called ex vivo method of returning plasma containing a living body to a living body, or (2) the method of administering an antigen-binding molecule into a living body has accelerated the disappearance rate of the antigen present in the plasma, It is measured whether it is accelerated compared to the case where it is not administered, or whether the antigen concentration in plasma is reduced by the ex vivo method or administration of an antigen-binding molecule. It can be confirmed by.
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time.
  • a method of returning to the body can also be used.
  • Whether or not the uptake is promoted is determined by the disappearance rate of the antigen in plasma confirmed in the above (1) and (2), in which human natural IgG, particularly human natural IgG1 is used instead of the antigen-binding molecule. It can also be confirmed by confirming whether or not the rate of disappearance of the antigen in plasma is confirmed by the method using the above.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor is bound to the antigen-binding molecule.
  • Contacting includes administering an antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • the present invention further increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in the antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor,
  • a method for facilitating uptake of an antigen-binding molecule or an antigen that binds to an antigen-binding molecule into a cell comprising an antigen-binding domain whose binding activity to the antigen varies depending on ion concentration conditions.
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor,
  • a method for facilitating uptake of an antigen-binding molecule or an antigen that binds to an antigen-binding molecule into a cell comprising an antigen-binding domain in which the antigen-binding domain of the antigen-binding molecule of the antigen-binding molecule is altered depending on conditions. .
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in the antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, Incorporation of an antigen-binding molecule or an antigen that binds to an antigen-binding molecule into a cell, wherein at least one amino acid is an amino acid in which the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen changes depending on calcium ion concentration conditions or pH conditions Provide a way to promote.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • the present invention relates to a method for increasing the number of antigens to which an antigen-binding molecule binds per molecule.
  • a method is provided for increasing the number of antigens bound by an antigen binding molecule per molecule in vivo or in vitro, comprising increasing the number of binding domains for the receptor.
  • the number of antigens to which an antigen-binding molecule binds per molecule means the number of antigens that can be bound before the antigen-binding molecule is degraded and disappears.
  • “increasing the number of antigens that can be bound by an antigen-binding molecule per molecule” means increasing the number of times that an antigen molecule bound to the antigen-binding molecule dissociates and binds to the antigen molecule again.
  • the antigen molecule that binds to the antigen-binding molecule can be the same antigen molecule present in the reaction system in which both molecules exist, or can be a different molecule.
  • an antigen-binding molecule bound to an antigen is assumed to be one cycle in which the antigen-binding molecule returns to the outside of the cell after the antigen-binding molecule bound to the antigen is taken into the cell and dissociates the antigen in the endosome. When this is done, the number of cycles that can be rotated before the antigen-binding molecule is degraded and disappears is increased.
  • the antigen-binding molecule of the present invention having binding activity to a sugar chain receptor in the neutral pH range is bound to the sugar chain receptor and then taken up into the cell of the cell expressing the sugar chain receptor by endocytosis. .
  • the antigen-binding molecule of the present invention released from the sugar chain receptor in the acidic region is recycled again to the outside of the cell by binding to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic region.
  • FcRn particularly human FcRn
  • the antigen-binding molecule of the present invention that is recycled to the outside of the cell after the antigen is dissociated from the antigen-binding molecule in the acidic region can bind to the antigen again. Therefore, whether or not the number of cycles has increased can be determined by whether or not “promoting uptake into cells” is described above, or whether or not “pharmacokinetics” described later is improved.
  • the method of “increasing the number of binding domains for a sugar chain receptor” includes one or more of the methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification. Combinations can be used as appropriate.
  • the binding of the antigen-binding molecule of the present invention to the antigen can be performed in vitro, and whether or not the number of antigens bound to the antigen-binding molecule per molecule has been increased is, for example, (1) antigen binding molecule and antigen binding After the plasma containing the antigen that binds to the molecule was taken out of the living body, it was recycled to the outside of the cell (also called re-secretion or recirculation) after a certain period of contact with cells expressing the sugar chain receptor.
  • the so-called ex vivo method of returning plasma containing antigen-binding molecules that do not bind antigen to the living body, or (2) the method of administering antigen-binding molecules into the living body promotes the disappearance rate of the antigen present in the plasma. Or whether the antigen-binding molecule is accelerated compared to the case where the antigen-binding molecule is not administered, or the antigen concentration in plasma is reduced by the ex vivo method or administration of the antigen-binding molecule. Rukado or can be confirmed by measuring.
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time.
  • a method of returning to the body can also be used.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor is bound to the antigen-binding molecule.
  • Contacting includes administering an antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • the present invention further increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in the antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, Provided is a method for increasing the number of antigens that can be bound in vivo or in vitro by a single antigen-binding molecule, which includes an antigen-binding domain whose antigen-binding activity varies depending on ion concentration conditions. Furthermore, the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and depending on the condition of the ion concentration.
  • a method for increasing the number of antigens that can be bound by a single antigen-binding molecule in vivo or in vitro which comprises contacting a receptor-expressing cell in vivo or in vitro.
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and at least the antigen binding domain.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain, and two or more binding domains for a sugar chain receptor.
  • a method for increasing the ability of an antigen-binding molecule to eliminate an antigen in vivo or in vitro which comprises increasing the number of binding domains for the sugar chain receptor.
  • the antigen present outside the cell means an antigen present outside the cell expressing the sugar chain receptor.
  • antigens that are present outside the cell such as blood, plasma, serum, urine, lymph, saliva, tears, and other body fluids are present outside the cell. It can be illustrated as an example.
  • the antigen-binding molecule of the present invention administered to a living body is not limited to the antigen present in these body fluids as long as it can bind outside the cell expressing the sugar chain receptor.
  • an antigen present in plasma is preferred.
  • an antigen present in the fluid can be exemplified as an example of an antigen present outside the cell.
  • the antigen-binding molecule of the present invention having binding activity to a sugar chain receptor in the neutral pH range is bound to the sugar chain receptor and then taken up into the cell of the cell expressing the sugar chain receptor by endocytosis. .
  • the antigen-binding molecule of the present invention released from the sugar chain receptor in the acidic region is recycled again to the outside of the cell by binding to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic region.
  • FcRn particularly human FcRn
  • the antigen-binding molecule of the present invention that is recycled to the outside of the cell after the antigen is dissociated from the antigen-binding molecule in the acidic region can bind to the antigen again. In this case, the dissociated antigen undergoes degradation in intracellular lysosomes.
  • the antigen existing outside the cell expressing the sugar chain receptor bound to the antigen-binding molecule of the present invention is degraded by the lysosome inside the cell expressing the sugar chain receptor. Is done. As a result of such degradation of the antigen, it is considered that the antigen present outside the cell decreases.
  • body fluid such as blood, plasma, serum, urine, lymph, saliva, tears, etc. Blood, plasma, serum, urine, and lymph fluid removed from the living body, by measuring the amount of antigen present outside the cell, and when cells expressing sugar chain receptors are present outside the body. It can be evaluated by measuring the amount of antigen present in the culture solution for culturing the cells, in addition to body fluids such as fluid and tears.
  • the method of “increasing the number of binding domains for a sugar chain receptor” includes one or more of the methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification. Combinations can be used as appropriate.
  • an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn-binding domain and two or more binding domains for a sugar chain receptor, comprising increasing the number of binding domains for the sugar chain receptor Whether or not the antigen-dissipating ability of the antigen-binding molecule in vivo or in vitro is increased, for example, (1) after the antigen-binding molecule and the plasma containing the antigen binding to the antigen-binding molecule are once taken out of the body The so-called plasma that contains antigen-binding molecules that do not bind antigen, which is recycled to the outside of cells after contact with cells expressing sugar chain receptors (re-secretion or recirculation) after a certain period of time.
  • Whether the antigen outside the cell has disappeared is determined by the ex vivo method or (2) the method of administering the antigen-binding molecule in vivo. And can be confirmed by In the method (1), plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time. A method of returning to the body can also be used. Therefore, whether or not the antigen present outside the cell has decreased is, for example, whether or not the amount of antigen present in plasma is decreased compared to the case where the antigen-binding molecule is not administered, or the ex vivo method. Alternatively, it can be confirmed by measuring whether the antigen concentration in plasma is reduced by administration of the antigen-binding molecule.
  • whether or not the amount of antigen in plasma is decreased depends on whether the rate of disappearance of the antigen in plasma confirmed in the above (1) and (2) is human natural IgG in place of the antigen-binding molecule. It can also be confirmed by confirming whether or not the rate of disappearance of the antigen in plasma is confirmed by the method using human natural IgG1.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vitro as well as in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor.
  • Contacting an antigen-binding molecule with this includes administering the antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and the ion concentration
  • the present invention provides a method for increasing the ability of an antigen-binding molecule to eliminate an antigen in vivo or in vitro, which comprises an antigen-binding domain whose binding activity to the antigen varies depending on the conditions.
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and depending on the condition of the ion concentration.
  • an antigen-binding molecule for increasing the ability of an antigen-binding molecule to dissipate an antigen in vivo or in vitro, comprising an antigen-binding domain with altered antigen-binding activity. Furthermore, the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and at least of the antigen binding domains.
  • a method for increasing the ability of an antigen-binding molecule to eliminate an antigen in vivo or in vitro, wherein one amino acid is an amino acid in which the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen changes depending on calcium ion concentration conditions or pH conditions provide.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • the present invention relates to a binding domain for a sugar chain receptor in an antigen-binding molecule comprising an antigen-binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for a sugar chain receptor.
  • a method is provided for improving the pharmacokinetics of an antigen-binding molecule, comprising increasing the number of.
  • “improvement of pharmacokinetics”, “improvement of pharmacokinetics” or “excellent pharmacokinetics” means “improvement of plasma (blood) retention”, “improvement of plasma (blood) retention” ”,“ Excellent plasma (blood) retention ”,“ prolonging plasma (blood) retention ”, and these terms are used interchangeably.
  • the phrase “improves pharmacokinetics” includes extending the time for which an antigen is bound to an antigen-binding molecule after administration of the antigen-binding molecule. Whether or not the time during which the antigen is bound to the antigen-binding molecule is prolonged after administration of the antigen-binding molecule is determined by measuring the plasma concentration of the antigen-binding molecule that is not bound to the antigen-binding molecule, The determination can be made based on the plasma concentration of the unbound antigen or the time until the ratio of the antigen-bound molecule unbound antigen concentration to the total antigen concentration increases.
  • the plasma concentration of the antigen-binding molecule non-binding antigen or the ratio of the antigen-binding molecule non-binding antigen concentration to the total antigen concentration can be carried out by methods known to those skilled in the art. For example, Pharm Res. (2006 ) 23 (1) The method measured in 95-103 can be used.
  • an antigen exhibits some function in vivo
  • whether the antigen is bound to an antigen-binding molecule (antagonist molecule) that neutralizes the function of the antigen is evaluated based on whether the function of the antigen is neutralized. It is also possible to do. Whether the antigen function is neutralized can be evaluated by measuring some in vivo marker that reflects the antigen function.
  • Whether an antigen is bound to an antigen-binding molecule (agonist molecule) that activates the function of the antigen can be evaluated by measuring some in vivo marker that reflects the function of the antigen.
  • Measurement of plasma concentration of unbound antigen, measurement of ratio of unbound antigen amount to total antigen amount, measurement of in vivo marker, etc. are not particularly limited, but constant after administration of antigen binding molecule It is preferably performed after a lapse of time.
  • the time after a fixed time has elapsed since the administration of the antigen-binding molecule is not particularly limited, and can be determined by a person skilled in the art according to the nature of the administered antigen-binding molecule. 1 day after administration of the molecule, 3 days after administration of the antigen binding molecule, 7 days after administration of the antigen binding molecule, 14 days after administration of the antigen binding molecule, For example, 28 days after the administration.
  • mice eg, normal mice, human antigen-expressing transgenic mice, transgenic mice expressing human FcRn, 32 or 276 strains (Jackson Laboratories)
  • Transgenic mice such as Methods Mol Biol. (2010) 602, 93-104, etc.
  • plasma retention in monkeys eg, cynomolgus monkeys, etc.
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, A method for improving the pharmacokinetics of an antigen-binding molecule is provided, which includes an antigen-binding domain whose binding activity to an antigen varies depending on the conditions. Furthermore, the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and depending on the condition of the ion concentration.
  • an antigen-binding molecule which comprises an antigen-binding domain with altered antigen-binding activity. Furthermore, the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and at least the antigen binding domain.
  • a method for improving the pharmacokinetics of an antigen-binding molecule wherein one amino acid comprises an antigen-binding domain in which the binding activity to an antigen is changed by a calcium ion concentration condition or a pH condition.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • the present invention relates to an antigen-binding molecule having two or more binding domains for an antigen-binding domain, an FcRn binding domain and a sugar chain receptor.
  • a method is provided for promoting dissociation of an extracellularly bound antigen from an antigen binding molecule comprising increasing the number of binding domains.
  • the location where the antigen dissociates from the antigen-binding molecule may be any location within the cell, but is preferably in the early endosome.
  • “dissociation of an antigen bound to an antigen-binding molecule outside the cell from the antigen-binding molecule within the cell” means that the antigen bound to the antigen-binding molecule outside the cell contains a saccharide contained in the antigen-binding molecule.
  • the antigen-binding molecule of the present invention having binding activity to a sugar chain receptor in the neutral pH range is bound to the sugar chain receptor and then taken up into the cell of the cell expressing the sugar chain receptor by endocytosis. .
  • the antigen-binding molecule of the present invention released from the sugar chain receptor in the acidic region is recycled again to the outside of the cell by binding to FcRn, particularly human FcRn, in the acidic region.
  • FcRn particularly human FcRn
  • the antigen-binding molecule of the present invention that is recycled to the outside of the cell after the antigen is dissociated from the antigen-binding molecule in the acidic region can bind to the antigen again. In this case, the dissociated antigen undergoes degradation in intracellular lysosomes.
  • the antigen existing outside the cell expressing the sugar chain receptor bound to the antigen-binding molecule of the present invention is degraded by the lysosome inside the cell expressing the sugar chain receptor. Is done. As a result of such degradation of the antigen, it is considered that the antigen present outside the cell decreases.
  • body fluid such as blood, plasma, serum, urine, lymph, saliva, tears, etc. Blood, plasma, serum, urine, and lymph fluid removed from the living body, by measuring the amount of antigen present outside the cell, and when cells expressing sugar chain receptors are present outside the body. It can be evaluated by measuring the amount of antigen present in the culture solution for culturing the cells, in addition to body fluids such as fluid and tears.
  • an antigen-binding molecule having two or more binding domains for an FcRn binding domain and a sugar chain receptor, comprising increasing the number of binding domains for the sugar chain receptor Whether or not the dissociation of the antigen bound outside the cell from the antigen-binding molecule is promoted is, for example, (1) after removing the antigen-binding molecule and the plasma containing the antigen binding to the antigen-binding molecule once in vitro, A so-called ex system that returns to the living body plasma containing an antigen-binding molecule that does not bind to an antigen that has been contacted with a cell that expresses a sugar chain receptor and recycled outside the cell after a certain period of time (also called re-secretion or recirculation).
  • plasma containing an antigen that binds to an antigen-binding molecule is once taken out from the living body, and then contacted with cells that express the antigen-binding molecule and the sugar chain receptor to produce plasma that has passed a certain period of time. A method of returning to the body can also be used.
  • whether or not the antigen present outside the cell has decreased is, for example, whether or not the amount of antigen present in plasma is decreased compared to the case where the antigen-binding molecule is not administered, or the ex vivo method. Alternatively, it can be confirmed by measuring whether the antigen concentration in plasma is reduced by administration of the antigen-binding molecule.
  • whether or not the amount of antigen in plasma is decreased depends on whether the rate of disappearance of the antigen in plasma confirmed in the above (1) and (2) is human natural IgG in place of the antigen-binding molecule. It can also be confirmed by confirming whether or not the rate of disappearance of the antigen in plasma is confirmed by the method using human natural IgG1.
  • any cell that expresses a sugar chain receptor that binds to a sugar chain receptor binding domain contained in an antigen-binding molecule can be used as long as it expresses a desired sugar chain receptor. It is not limited to specific cells.
  • a known database such as Human Protein Atlas (http://www.proteinatlas.org/) can be used to identify cells that express the desired sugar chain receptor.
  • the cell that expresses the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule and the antigen that binds to the antigen-binding molecule are contacted in vivo, in the present invention, the cell that expresses the sugar chain receptor is bound to the antigen-binding molecule.
  • Contacting includes administering an antigen-binding molecule to a living body.
  • the contact time is, for example, 1 minute to several weeks, 30 minutes to 1 week, 1 hour to 3 days, 2 hours to 1 day, that is, an antigen binding molecule or an antigen that binds to the antigen binding molecule is ended.
  • the time required for incorporation into cells by cytosis is appropriately employed.
  • hepatocytes can be used as cells that express the asialoglycoprotein receptor as a sugar chain receptor.
  • a wide range of cells including blood cells can be used as cells expressing the mannose receptor as a sugar chain receptor.
  • the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor contained in the antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, Provided is a method for promoting dissociation of an antigen bound to an antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain whose binding activity to the antigen varies depending on conditions from the antigen-binding molecule in the cell. Furthermore, the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and depending on the condition of the ion concentration.
  • a method for promoting dissociation of an antigen bound to an antigen-binding molecule containing an antigen-binding domain whose antigen-binding activity is changed extracellularly from the antigen-binding molecule in the cell Furthermore, the present invention increases the number of binding domains for the sugar chain receptor in an antigen binding molecule comprising an antigen binding domain, an FcRn binding domain and two or more binding domains for the sugar chain receptor, and at least of the antigen binding domains.
  • a method for promoting dissociation of an antigen bound to an antigen binding molecule which is an amino acid whose binding activity to the antigen varies depending on the condition of calcium ion concentration or pH, from the antigen binding molecule in the cell. I will provide a.
  • the method of “changing the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen depending on the condition of ion concentration” is one of a plurality of methods described as the method for producing an antigen-binding molecule in the present specification or A combination of methods can be used as appropriate.
  • an aspect represented by the expression “comprising” is an aspect represented by the expression “essentially consistent of”. And an aspect represented by the expression “consisting of”.
  • Example 1 Improving the effect of accelerating antigen disappearance by a pH-dependent antigen-binding antibody using a sugar chain receptor
  • an existing neutralizing antibody against a soluble antigen When an existing neutralizing antibody against a soluble antigen is administered, the antigen binds to the antibody in the plasma. It is expected that the sustainability will increase. Antibodies generally have a long half-life (1-3 weeks), whereas antigens generally have a short half-life (1 day or less). Therefore, an antigen bound to an antibody in plasma has a significantly longer half-life than when the antigen is present alone. As a result, administration of an existing neutralizing antibody results in an increase in plasma antigen concentration. Such cases have been reported for neutralizing antibodies targeting various soluble antigens. For example, IL-6 (J Immunotoxicol.
  • the administration of the existing neutralizing antibody has been reported to increase the total plasma antigen concentration by about 10 to 1000 times from the baseline (the degree of increase varies depending on the antigen).
  • the total antigen concentration in plasma means the concentration as the total amount of antigens present in plasma, that is, expressed as the sum of the antibody-bound and antibody-unbound antigen concentrations.
  • the plasma total antigen concentration increase. This is because in order to neutralize the soluble antigen, a plasma antibody concentration higher than at least the total plasma antigen concentration is required. In other words, when the plasma total antigen concentration increases by 10 to 1000 times, the plasma total antigen concentration does not increase even when the plasma antibody concentration (ie, antibody dose) is neutralized. This means that 10 to 1000 times are required. On the other hand, if the plasma total antigen concentration can be reduced by 10 to 1000 times compared to the existing neutralizing antibody, the dose of the antibody can be reduced by the same amount. Thus, an antibody capable of eliminating soluble antigen from plasma and reducing the plasma total antigen concentration is significantly more useful than existing neutralizing antibodies.
  • H54 / L28-IgG1 consisting of H54 (SEQ ID NO: 26) and L28 (SEQ ID NO: 27) described in WO 2009/125825 for pH-dependent human IL-6 receptor binding antibody is a humanized anti-IL-6 receptor GL1-IgG1 that is an antibody and consists of VH3-IgG1 (SEQ ID NO: 28) and VL3-CK (SEQ ID NO: 29) (in WO 2009/125825, this molecule is described as Fv4-IgG1), Humanized anti-IL-6 receptor antibody imparted with pH-dependent binding properties to H54 / L28-IgG1 to soluble human IL-6 receptor (binding at pH 7.4 and dissociating at pH 5.8) It is.
  • Soluble human IL-6 receptor bound to an antibody that binds to normal human IL-6 receptor is recycled into plasma by FcRn together with the antibody, whereas soluble human IL-6 receptor is pH-dependent and soluble human
  • the antibody that binds to the IL-6 receptor dissociates the soluble human IL-6 receptor bound to the antibody under acidic conditions in the endosome. Since the dissociated soluble human IL-6 receptor is degraded by lysosomes, it is possible to greatly accelerate the disappearance of the soluble human IL-6 receptor.
  • the antibody that binds to the receptor is recycled into the plasma by FcRn, and the recycled antibody can be bound to the soluble human IL-6 receptor again. By repeating this, one antibody molecule is repeatedly soluble several times. It becomes possible to bind to a human IL-6 receptor (FIG. 1).
  • IgG antibody has a long plasma retention by binding to FcRn. Binding between IgG and FcRn is observed only under acidic conditions (pH 6.0), and almost no binding is observed under neutral conditions (pH 7.4). IgG antibodies are taken up non-specifically by cells, but return to the cell surface by binding to FcRn in endosomes under acidic conditions in endosomes, and dissociate from FcRn under neutral conditions in plasma. When a mutation is introduced into the Fc region of IgG and the binding to FcRn is lost under acidic conditions, the antibody is not recycled from the endosome into the plasma, so that the antibody retention in the plasma is significantly impaired.
  • Enhancement of antigen disappearance accelerating effect by pH-dependent antigen-binding antibody using sugar chain receptor Antibody that binds to antigen in a pH-dependent manner accelerates disappearance of soluble antigen and decreases total antigen concentration in plasma It is extremely useful because one antibody molecule has the effect of repeatedly binding to a soluble antigen multiple times.
  • a sugar chain is added to an antibody that binds to an antigen in a pH-dependent manner, and the binding between the sugar chain added to the antibody and the sugar chain receptor is neutral (pH 7.4). )) And is dissociated under acidic conditions (pH 6.0), so that the antibody bound to the soluble antigen is taken into the cell in a sugar chain receptor-dependent manner.
  • a method of dissociating from a sugar chain receptor and dissociating from a soluble antigen, binding to FcRn, and being recycled into plasma again was verified (FIG. 2).
  • the binding between the sugar chain and the sugar chain receptor and the binding between the antigen and the antibody are pH-dependent. It is considered that the antibody-antigen complex is taken into the cell via the sugar chain receptor and the antigen-binding molecule needs to be dissociated from the sugar chain receptor and the antigen under the acidic condition of the endosome.
  • Fv4-IgG1 (referred to as GL1-IgG1 in the present invention) that is an antibody against the IL-6 receptor described in WO 2009/125825 is known.
  • galactose and asialoglycoprotein receptors were considered as sugar chains and sugar chain receptors having such characteristics.
  • the interaction between asialoglycoprotein receptor, one of the sugar chain receptors, and galactose is pH-dependent, and is known to exhibit high binding activity in the neutral pH range and low binding activity in the acidic pH range.
  • J. Biol. Chem. (1989) 274 (50), 35400-35406) is pH-dependent and is known to exhibit high binding activity in the neutral pH range and low binding activity in the acidic pH range.
  • mannose receptor and mannose one of the sugar chain receptors
  • Example 2 Preparation of a pH-dependent anti-human IL-6 receptor antibody in which a galactose-terminated complex-linked sugar chain is introduced into the variable region
  • X may be any amino acid except Pro
  • Ser / Thr represents Ser or Thr.
  • VH3-M111 (SEQ ID NO: 31) having a heavy chain constant region M111 (SEQ ID NO: 30) in which 297 in the EU numbering is substituted from Asn to Ala with respect to the heavy chain constant region of IgG1 was prepared.
  • H01-M111 (SEQ ID NO: 32) was prepared by substituting Lys to Asn at position 75 in the kabat numbering for the heavy chain variable region of VH3-M111.
  • L02-CK (SEQ ID NO: 33) in which the 18th in the kabat numbering was replaced from Ser to Asn
  • L03-CK (SEQ ID NO: 33) in which the 20th was replaced from Thr to Asn : 34)
  • L04-CK (SEQ ID NO: 35) with the 24th substituted from Gln to Asn
  • L06-CK (SEQ ID NO: 36) with the 20th and 24th substituted from Thr to Asn and Gln to Asn, respectively.
  • the method for introducing amino acid substitution was carried out according to a method known to those skilled in the art of Reference Example 1.
  • H54 / L28-IgG1 consisting of H54 (SEQ ID NO: 26) and L28 (SEQ ID NO: 27), GL1-IgG1, VH3- consisting of VH3-IgG1 (SEQ ID NO: 28) and VL3-CK (SEQ ID NO: 29)
  • GL1-M111 consisting of M111 (SEQ ID NO: 31) and VL3-CK
  • GL2-M111 consisting of VH3-M111 and L02-CK
  • VH3-M111 and L03-CK SEQ ID NO: 34
  • GL3-M111, VH3-M111 and L04-CK SEQ ID NO: 35
  • GL4-M111, VH3-M111 and L06-CK SEQ ID NO: 36) GL5-M111, H01-M111 (SEQ ID NO: 35) 32) and GL3-M111 consisting of VL3-CK, GL7-M111 consisting of H01
  • Human natural IgG1 has an N-linked sugar chain added to Asn at residue 297 in EU numbering.
  • a modified constant region called M111 in which 297th Asn was substituted with Ala was used.
  • the heavy chain was located at the lower end of the 50 kDa molecular weight marker and the light chain was located at the upper end of the 25 kDa molecular weight marker.
  • the light chain band shifted to a higher molecular weight side than GL1-M111.
  • the light chain band was shifted to a higher molecular weight than GL2-M111 to GL4-M111.
  • the heavy chain band shifted to the higher molecular weight side than GL1-M111.
  • GL7-M111 to GL9-M111 in which two glycosylation sites are introduced, one for each heavy chain and light chain, both have a band shift on the high molecular weight side compared to GL1-M111.
  • GL10-M111 which has 3 sugar chain addition sites, 1 in the heavy chain and 2 in the light chain, has a heavy chain band on the higher molecular weight side than GL1-M111, and a light chain band on the GL7-M111. Shifted to higher molecular weight than GL9-M111.
  • N-linked glycans by anion exchange chromatography By assessing the shape change of the chromatogram of anion exchange chromatography before and after sialic acid removal by Neuraminidase Whether it was a sugar chain and the presence or absence of sialic acid binding to the end of the complex sugar chain were evaluated. Neuraminidase (Roche) was added to GL1 to GL10 prepared at 50 mmol / L Acetate pH 5.0 and allowed to stand at 37 ° C. overnight.
  • GL1-M111 with no sugar chain added had a single peak before neuraminidase treatment, and no change in the chromatogram associated with neuraminidase treatment was observed.
  • GL2-M111 to GL10-M111 to which sugar chains were added showed hetero peaks before neuraminidase treatment. A decrease in the number of peaks detected with neuraminidase treatment was observed.
  • sialic acid was added to the glycan ends of GL2-M111 to GL10-M111.
  • the N-type sugar chain added to GL2-M111 to GL10-M111 is not a high mannose type. It was shown to be a complex type sugar chain in which multiple sialic acids were bonded. From this, it was confirmed that a molecule in which the galactose at the end of the complex type sugar chain was exposed could be prepared by neuraminidase treatment.
  • Mass spectrometry of GL5-M1111 Mass spectrometry was performed to estimate the N-linked sugar chain added to GL5-M111 from the mass.
  • GL5-M11 after Neuraminidase treatment was reduced using DTT (Wako), and RP-LC / ESI-MS was performed using Ultimate3000 (Dionex) and LTQ VELOS (Thermo scientific). Which of the bifurcated N-linked sugar chains shown in Table 1 was added was estimated from the mass, and the obtained mass chromatogram is shown in FIG.
  • the recognition efficiency via sugar chain receptors is thought to improve. Therefore, addition of G2, G3, and G4 was observed among the bifurcated N-linked sugar chains. As shown in FIG. 5, the two sugar chains added to the light chain are both G2, G2 and G3 added, G3 added and / or G2 and G4 added. .
  • Neuraminidase Inactivation Treatment Neuraminidase contained in GL5-M111 that had undergone neuraminidase treatment was removed to remove sialic acid at the N-linked sugar chain end.
  • GL5-M111 after treatment with neuraminidase GL5-M111-SA (-) was purified with Protein A and then incubated at 60 ° C for 10 minutes (heat treated product).
  • the light chain of GL5-IgG1 was greatly shifted to the higher molecular weight side than the light chain of GL1-IgG1. From this, it was considered that the sugar chain in the constant region did not affect the addition of the sugar chain to the variable region, and in GL5-IgG1, N-linked sugar chains were added at two positions of the light chain. In GL5-M111 and GL5-IgG1, it was observed by anion exchange chromatography and mass spectrometry that the same N-linked sugar chain was added to the light chain (data not shown).
  • GL1-IgG1-SA, GL1-M111-SA, GL2-M111-SA, GL3-M111-SA, GL4-M111-SA, GL5-M111-SA, GL6 prepared for evaluation of binding to human IL-6 receptor (hIL6R) -Terminal sialic acid is removed by treating neuraminidase to M111-SA, GL7-M111-SA, GL8-M111-SA, GL9-M111-SA, and GL10-M111-SA by the method described above, and galactose GL1-IgG1-SA (-), GL1-M111-SA (-), GL2-M111-SA (-), GL3-M111-SA (-), GL4-M111-SA (-) , GL5-M111-SA (-), GL6-M111-SA (-), GL7-M111-SA (-), GL8-M111-SA (-), GL9-
  • Two running buffers 10 mmol / L ACES, 150 mmol / L NaCl, 0.05% (w / v) Tween20, pH7.4 or pH6.0, are used for dilution of IL-6R. did. After running the running buffer at a flow rate of 20 ⁇ L / min for 5 minutes and observing the dissociation of IL-6 receptor, 10 mmol / L Glycine-HCl, pH 1.5 was injected at a flow rate of 30 ⁇ L / min for 5 seconds. The sensor chip was regenerated by repeating 5 times. All measurements were performed at 37 ° C.
  • association rate constant ka (1 / Ms) and dissociation rate constant kd (1 / s), which are kinetic parameters, are calculated from the sensorgram obtained from the measurement, and the human IL- K D (M) for 6 receptors was calculated.
  • Biacore T100 Evaluation Software (GE Healthcare) was used for calculation of each parameter. It shows the K D values of each antibody in pH 7.4 or pH 6.0, which is the result determined in Table 3 below. In both conditions of pH7.4 and pH 6.0, a large difference in K D values of both antibodies was observed.
  • GL1-IgG1-SA (+), H54L28-IgG1-SA (+), GL1-IgG1-SA (-), GL5-IgG1-SA (-) human Kinetic analysis of antigen-antibody reaction with IL-6 receptor was performed.
  • GL1-IgG1-SA ( ⁇ ) and GL5-IgG1-SA ( ⁇ ) samples treated with sialidase were used for measurement.
  • An appropriate amount of Anti-Human IgG ( ⁇ -chain specific), F (ab ′) 2 fragment antibody produced in goat (Sigma) is immobilized on Sensor chip CM5 (GE Healthcare) by the amine coupling method. was captured.
  • human IL-6 receptor diluted solution and a blank running buffer were injected at a flow rate of 20 ⁇ L / min for 3 minutes to allow the human IL-6 receptor to interact with the antibody captured on the sensor chip.
  • Two running buffers 10 mmol / L ACES, 150 mmol / L NaCl, 0.05% (w / v) Tween20, pH7.4 or pH6.0, are used for dilution of IL-6R. did.
  • 10 mmol / L Glycine-HCl, pH 1.5 was injected at a flow rate of 30 ⁇ L / min for 5 seconds.
  • the sensor chip was regenerated by repeating 5 times. All measurements were performed at 37 ° C.
  • the association rate constant ka (1 / Ms) and dissociation rate constant kd (1 / s), which are kinetic parameters, are calculated from the sensorgram obtained from the measurement, and the human IL- K D (M) for 6 receptors was calculated.
  • Biacore T100 Evaluation Software (GE Healthcare) was used for calculation of each parameter. Consequently determined pH 7.4, exhibited a K D values for each antibody in pH 6.0 in Table 4 below.
  • Example 3 Verification of the effect of accelerating antigen disappearance by a pH-dependent anti-human IL-6 receptor antibody in which a galactose-terminal N-linked sugar chain is introduced into a variable region using normal mice
  • hsIL-6R soluble human IL-6 receptor: prepared in Reference Example 3
  • the pharmacokinetics of hsIL-6R and anti-human IL-6 receptor antibody after co-administration of human IL-6 receptor antibody were evaluated.
  • hsIL-6R solution (5 ⁇ g / mL) or a mixed solution of hsIL-6R and anti-human IL-6 receptor antibody (5 ⁇ g / mL and 0.1 mg / mL, respectively) was administered once at 10 mL / kg into the tail vein. At this time, since a sufficient amount of anti-human IL-6 receptor antibody is present in excess of hsIL-6R, it is considered that almost all hsIL-6R is bound to the antibody. Blood was collected for 15 minutes, 7 hours, 1 day, 2 days, 3 days, 4 days, 7 days, 14 days, 21 days, and 28 days after administration. The collected blood was immediately centrifuged at 4 ° C. and 15,000 rpm for 15 minutes to obtain plasma.
  • the separated plasma was stored in a freezer set to ⁇ 20 ° C. or lower until measurement was performed.
  • the anti-human IL-6 receptor antibody the aforementioned GL1-M111, GL5-M111, H54 / L28-IgG1, GL1-IgG1, and GL5-IgG1 were used.
  • Anti-Human IgG ( ⁇ -chain specific) F (ab ') 2 Fragment of Antibody (SIGMA) was dispensed onto Nunc-Immuno Plate, MaxiSoup (Nalge nunc International), and left at 4 ° C overnight to allow Anti- Human IgG solid phase plate was prepared.
  • FIG. 8 or 10 shows changes in plasma antibody concentration in normal mice after intravenous administration measured by this method.
  • the plasma hsIL-6R concentration of mice was measured by electrochemiluminescence method.
  • the final concentration of WT-IgG1 consisting of H (WT) (SEQ ID NO: 37) and L (WT) (SEQ ID NO: 38) is the anti-human IL- contained in the sample.
  • the purpose was to bring the entire concentration of hsIL-6R in the sample into binding with WT-IgG1 at an excess of 333 ⁇ g / mL over the 6 receptor antibody concentration. Then, it dispensed to MA400 PR Streptavidin Plate (Meso Scale Discovery).
  • hsIL-6R administered at the same time as GL5-M111-SA (-) or GL5-IgG1-SA (-) with an N-linked sugar chain added is N-linked. Loss of hsIL-6R is markedly faster compared to hsIL-6R administered at the same time as GL1-M111-SA (-) or GL1-IgG1-SA (-) without added sugar chain confirmed.
  • N-linked sugar chains GL5-M111-SA (-) and GL5-IgG1-SA (-) can reduce plasma hsIL-6R concentration by about 6 and 27 times after 2 days, respectively. It was found.
  • the plasma antibody concentration transitions of GL1-IgG1-SA (+) and GL1-IgG1-SA (-) are equal, and at the same time as GL1-IgG1-SA (+) Since the disappearance of administered hIL-6R is equivalent to the disappearance of hIL-6R administered simultaneously with GL1-IgG1-SA (-), the N-linked sugar added at position 297 in the EU numbering of the heavy chain constant region It has been shown that removal of sialic acid from the chain does not affect the plasma concentration of antibody or the disappearance of soluble IL-6 receptor.
  • a normal neutralizing antibody such as H54 / L28-IgG1-SA (+) reduces the clearance of the bound antigen when the antibody is administered, and the antigen stays longer in plasma. It is not preferable that the retention of the antigen whose antigen is desired to be neutralized by antibody administration be prolonged in plasma. By imparting pH dependence (binding under neutral conditions and dissociating under acidic conditions) to binding to the antigen, the retention of the antigen in plasma can be shortened. In this study, the plasma retention of the antigen could be further shortened by adding an N-linked sugar chain.
  • any location where an N-linked sugar chain can be added without being involved in binding to the antigen is considered to have an effect of accelerating the disappearance of the antigen.
  • Example 4 Preparation of pH-dependent binding anti-human IL-6 receptor antibody in which a high-mannose sugar chain is introduced into the variable region
  • Preparation of pH-dependent human IL-6 receptor binding antibody having high mannose type sugar chain GL1-IgG1 consisting of VH3-IgG1 (SEQ ID NO: 28) and VL3-CK (SEQ ID NO: 29), and VH3-IgG1 (sequence) GL5-IgG1 consisting of No. 28) and L06-CK (SEQ ID NO: 36) was expressed and purified.
  • the method of expression and purification was performed according to a method known to those skilled in the art of Reference Example 2.
  • kifunensine SIGMA was added to the cell culture solution at 10 ⁇ g / mL to obtain GL1-IgG1_kif + and GL5-IgG1_kif + having high mannose-type sugar chains.
  • the light chain of GL5-IgG1_kif + was greatly shifted to the higher molecular weight side than the light chain of GL1-IgG1_kif +. From this, it was considered that N-linked sugar chains were added at two positions of the light chain even in the presence of kifnensien.
  • Two running buffers 10 mmol / L ACES, 150 mmol / L NaCl, 0.05% (w / v) Tween20, pH7.4 or pH6.0, are used for dilution of IL-6R. did. After running the running buffer at a flow rate of 20 ⁇ L / min for 5 minutes and observing the dissociation of IL-6 receptor, 10 mmol / L Glycine-HCl, pH 1.5 was injected at a flow rate of 30 ⁇ L / min for 5 seconds. The sensor chip was regenerated by repeating 5 times. All measurements were performed at 37 ° C.
  • association rate constant ka (1 / Ms) and dissociation rate constant kd (1 / s), which are kinetic parameters, are calculated from the sensorgram obtained from the measurement, and the human IL- K D (M) for 6 receptors was calculated.
  • Biacore T100 Evaluation Software (GE Healthcare) was used for calculation of each parameter.
  • Example 4 Verification of the effect of accelerating antigen disappearance by a pH-dependent anti-human IL-6 receptor antibody in which a high-mannose sugar chain is introduced into a variable region using normal mice
  • hsIL-6R soluble human IL-6 receptor: prepared in Reference Example 3
  • the pharmacokinetics of hsIL-6R and anti-human IL-6 receptor antibody after co-administration of human IL-6 receptor antibody were evaluated.
  • hsIL-6R solution (5 ⁇ g / mL) or a mixed solution of hsIL-6R and anti-human IL-6 receptor antibody (5 ⁇ g / mL and 0.1 mg / mL, respectively) was administered once at 10 mL / kg into the tail vein. At this time, since a sufficient amount of anti-human IL-6 receptor antibody is present in excess of hsIL-6R, it is considered that almost all hsIL-6R is bound to the antibody. Blood was collected 15 minutes, 7 hours, 1 day, 2 days, 3 days, 4 days, and 7 days after administration. The collected blood was immediately centrifuged at 4 ° C. and 15,000 rpm for 15 minutes to obtain plasma.
  • the separated plasma was stored in a freezer set to ⁇ 20 ° C. or lower until measurement was performed.
  • the anti-human IL-6 receptor antibody the above-mentioned GL1-IgG1_kif + and GL5-IgG1_kif + were used.
  • Anti-Human IgG ( ⁇ -chain specific) F (ab ') 2 Fragment of Antibody (SIGMA) was dispensed onto Nunc-Immuno Plate, MaxiSoup (Nalge nunc International), and left at 4 ° C overnight to allow Anti- Human IgG solid phase plate was prepared.
  • FIG. 14 shows changes in plasma antibody concentrations in normal mice after intravenous administration measured by this method.
  • the plasma hsIL-6R concentration of mice was measured by electrochemiluminescence method.
  • the final concentration of WT-IgG1 consisting of H (WT) (SEQ ID NO: 37) and L (WT) (SEQ ID NO: 38) is the anti-human IL- contained in the sample.
  • the purpose was to bring the entire concentration of hsIL-6R in the sample into binding with WT-IgG1 at an excess of 333 ⁇ g / mL over the 6 receptor antibody concentration. Then, it dispensed to MA400 PR Streptavidin Plate (Meso Scale Discovery).
  • FIG. 15 shows changes in plasma hsIL-6R concentration in normal mice after intravenous administration measured by this method.
  • HsIL-6R administered at the same time as GL5-IgG1_kif + with added chain was compared with hsIL-6R administered at the same time as GL1-IgG1_kif + without added mannose-type sugar chain at 7 h after administration in plasma It was found that the -6R concentration can be reduced by about 12.9 times. By adding a mannose-type sugar chain, the plasma concentration of the antibody was reduced as described above, but it was found that the effect of reducing the plasma hsIL-6R concentration was much higher than that.
  • the purified antibody concentration was measured by measuring the absorbance at 280 nm using a spectrophotometer, and the antibody concentration was calculated from the obtained value using an extinction coefficient calculated by a method such as PACE (Protein Science (1995) 4 , 2411-2423).
  • soluble human IL-6 receptor Recombinant human IL-6 receptor of human IL-6 receptor as an antigen was prepared as follows. CHO constant expression strain of soluble human IL-6 receptor (hsIL-6R) consisting of amino acid sequence from 1st to 357th N-terminal side reported in J. Immunol. 152, 4958-4968 (1994) was constructed and cultured by methods known to those skilled in the art to express hsIL-6R. From the obtained culture supernatant, hsIL-6R was purified by two steps of Blue Sepharose 6 FF column chromatography and gel filtration column chromatography. The fraction eluted as the main peak in the final step was used as the final purified product.
  • hsIL-6R soluble human IL-6 receptor
  • the first selection from the constructed human antibody phage display library concentrates only the antibody fragments that have the ability to bind to the antigen, or indicates the Ca-dependent binding ability Concentrated to When antibody fragments having Ca-dependent binding ability were concentrated, phages were eluted by chelating Ca ions with EDTA after binding to antigen in the presence of Ca ions. Biotin-labeled human IL-6 receptor was used as the antigen.
  • Phage was produced from E. coli holding the phage display phagemid constructed as described above, and the resulting culture was precipitated with 2.5 M NaCl / 10% PEG and diluted with TBS to obtain a phage library solution.
  • BSA and CaCl2 were added to the phage library solution to prepare a final concentration of 4% BSA and an ionized calcium concentration of 1.2 mM.
  • Panning was performed by referring to a panning method using an antigen immobilized on magnetic beads, which is a common method (J Immunol. Methods. (2008) 332 (1-2), 2-9, J Immunol. Methods. (2001) 247 (1-2), 191-203, Biotechnol. Prog. (2002) 18 (2), 212-220, Mol. Cell.
  • NeutrAvidin coated beads (Sera-Mag SpeedBeads NeutrAvidin-coated) or Streptavidin coated beads (Dynabeads M-280 Streptavidin) were used as magnetic beads.
  • E. coli strain TG1 in the logarithmic growth phase 10 mL was added, and infection was carried out by gently stirring culture at 37 ° C. for 1 hr. Infected E. coli were plated onto 225 mm x 225 mm plates. The culture was started again from this Escherichia coli, and phages were cultured.
  • concentration was performed using Ca-dependent binding ability as an index. Specifically, 40 pmol of biotin-labeled antigen was added to the prepared phage library solution and contacted with the antigen at room temperature for 60 minutes. Magnetic beads blocked with BSA were added and allowed to bind for 15 minutes at room temperature. 1.2 mM CaCl 2 /TBST(1.2 mM CaCl 2 1 mL of the beads were washed once with a TBS) containing 0.1% Tween-20 1.2 mM CaCl2 / TBS.
  • phage-containing culture supernatants were collected from E. coli single colonies obtained by the above method.
  • BSA and CaCl 2 were added to the phage-containing culture supernatant to a final concentration of 4% BSA and a calcium ion concentration of 1.2 mM, and subjected to ELISA.
  • StreptaWell 96 microtiter plates (Roche) were coated overnight with 100 ⁇ L of PBS containing biotin-labeled antigen.
  • Antibody expression was carried out using the following method. Suspend human fetal kidney cell-derived FreeStyle 293-F strain (Invitrogen) in FreeStyle 293 Expression Medium medium (Invitrogen), inoculate 3 mL of each well into a 6-well plate at a cell density of 1.33 ⁇ 10 6 cells / mL, and use lipofection. The plasmid prepared by the method was introduced into the cells.
  • a light chain sequence in which the light chain variable region of SEQ ID NO: 41 and the constant region of the light chain ⁇ chain (SEQ ID NO: 42) were fused was prepared.
  • H54 / L28-IgG1 dashed chain SEQ ID NO: 26, light chain SEQ ID NO: 27
  • As the high calcium ion concentration 2 mM was used, and as the condition for the low calcium ion concentration, 3 ⁇ M was used.
  • Human IL-6 receptor (IL-6R) was used as the antigen.
  • An appropriate amount of protein A (Invitrogen) was immobilized on the Sensor chip CM4 (GE Healthcare) by the amine coupling method, and the target antibody was captured there.
  • the running buffer 10 mmol / L ACES, 150 mmol / L NaCl, 0.05% (w / v) Tween20,2 mmol / L CaCl 2, pH7.4 or 10 mmol / L ACES, 150 mmol / L NaCl, 0.05% (w / v) Tween 20, 3 ⁇ mol / L CaCl 2 , pH 7.4 were used. All measurements were performed at 37 ° C., and each buffer was used for dilution of IL-6R.
  • IL-6R dilution and blank running buffer were injected at a flow rate of 20 ⁇ L / min for 3 minutes, and IL-6R interacted with the antibody captured on the sensor chip.
  • 10 mmol / L Glycine-HCl, pH 1.5 was injected at a flow rate of 30 ⁇ L / min for 30 seconds to regenerate the sensor chip.
  • association rate constant ka (1 / Ms) and dissociation rate constant kd (1 / s), which are kinetic parameters, are calculated from the sensorgrams obtained from the measurement, and the human IL-
  • the dissociation constant K D (M) for 6 receptors was calculated.
  • Biacore T100 Evaluation Software (GE Healthcare) was used for calculation of each parameter.
  • IL-6R diluted solution and blank running buffer were injected at a flow rate of 5 ⁇ L / min for 15 minutes, and IL-6R interacted with the antibody captured on the sensor chip. I let you. Thereafter, 10 mmol / L Glycine-HCl, pH 1.5 was injected at a flow rate of 30 ⁇ L / min for 30 seconds to regenerate the sensor chip.
  • the dissociation constant K D (M) was calculated using the steady state affinity model for the sensorgram obtained by the measurement. Biacore T100 Evaluation Software (GE Healthcare) was used for calculation of each parameter.
  • Req C ⁇ Rmax / (K D + C) + RI
  • Req (RU) Steady state binding levels
  • Rmax (RU) Analyte binding capacity of the surface RI
  • RU Bulk refractive index contribution in the sample
  • Table 8 shows the results of estimating the dissociation constant KD between each antibody and IL-6R predicted when the Ca concentration is 3 ⁇ mol / L using this equation 1.
  • FH4-IgG1,6RL # 9-IgG1 is, by the 2 mM CaCl 2 to 3 [mu] M CaCl 2, about 60 times K D for IL-6R, respectively, about 120-fold increase (60-fold, 120-fold It was predicted that the affinity was reduced.
  • Table 9 H54 / L28-IgG1, FH4 -IgG1,6RL 2 mMCaCl 2 the presence of three types of antibodies # 9-IgG1 and 3 [mu] M KD values of CaCl 2 presence and the Ca dependence of K D values Summarized.
  • the protein solution was adjusted to 0.1 mg / mL with the solution used for dialysis, and DSC measurement was performed at a temperature increase rate of 240 ° C./hr from 20 ° C. to 115 ° C.
  • Table 10 shows the heat denaturation intermediate temperature (Tm value) of the Fab domain of each antibody based on the obtained DSC denaturation curve.
  • FH4 and 6RL # 9 which show calcium-dependent binding ability, vary in the Tm value of Fab depending on the concentration of calcium ion, and H54 / L28, which does not show calcium-dependent binding ability, does not change in Tm value. Indicated. The fluctuations in the Tm values of Fab shown in FH4 and 6RL # 9 indicate that calcium ions bound to these antibodies and the Fab portion was stabilized. This showed that FH4 and 6RL # 9 bound calcium ions, while H54 / L28 did not bind calcium ions.
  • the concentration of hsIL-6R in the mixed solution is all 5 ⁇ g / mL, but the concentration of anti-human IL-6 receptor antibody varies from antibody to antibody, H54 / L28-IgG1 is 0.1 mg / mL, 6RL # 9-IgG1 and FH4- IgG1 is 10 mg / mL, and at this time, a sufficient amount of anti-human IL-6 receptor antibody is present in excess of hsIL-6R. Therefore, it is considered that hsIL-6R is mostly bound to the antibody. Blood was collected at 15 minutes, 7 hours, 1 day, 2 days, 4 days, 7 days, 14 days, 21 days, and 28 days after administration. The collected blood was immediately centrifuged at 4 ° C. and 12,000 rpm for 15 minutes to obtain plasma. The separated plasma was stored in a freezer set to ⁇ 20 ° C. or lower until measurement was performed.
  • Anti-Human IgG ( ⁇ -chain specific) F (ab ') 2 Fragment of Antibody (SIGMA) was dispensed onto Nunc-Immuno Plate, MaxiSoup (Nalge nunc International), and left at 4 ° C overnight to allow Anti- Human IgG solid phase plate was prepared.
  • FIG. 19 shows changes in plasma antibody concentrations of H54 / L28-IgG1, 6RL # 9-IgG1, and FH4-IgG1 in normal mice after intravenous administration measured by this method.
  • the plasma hsIL-6R concentration of mice was measured by electrochemiluminescence method.
  • the assay buffer at that time contains 10 mM EDTA, which reduces the Free Ca concentration in the sample, and almost all hsIL-6R in the sample is dissociated from 6RL # 9-IgG1 or FH4-IgG1 and added.
  • the purpose was to combine with tocilizumab. Then, it dispensed to MA400 PR Streptavidin Plate (Meso Scale Discovery). Further, after reacting at 25 ° C. for 1 hour and washing, Read Buffer T ( ⁇ 4) (Meso Scale Discovery) was dispensed and immediately measured with a SECTOR PR 400 reader (Meso Scale Discovery).
  • the hSIL-6R concentration was calculated from the response of the calibration curve using analysis software SOFTmax PRO (Molecular Devices).
  • FIG. 20 shows changes in plasma hsIL-6R concentration in normal mice after intravenous administration measured by this method.
  • hsIL-6R alone showed a very rapid disappearance, whereas when hsIL-6R and H54 / L28-IgG1, which is a normal antibody without Ca-dependent binding, were administered simultaneously, hsIL-6R The disappearance of was greatly delayed. On the other hand, when 6RL # 9-IgG1 or FH4-IgG1 having 100-fold or more Ca-dependent binding was simultaneously administered to hsIL-6R, the disappearance of hsIL-6R was greatly accelerated.
  • 6RL # 9 antibody expressed for use in X-ray crystal structure analysis was purified. Specifically, as shown in Reference Example 5, an animal expression plasmid prepared so that the heavy chain and the light chain of the 6RL # 9 antibody can be expressed, respectively, is transiently introduced into animal cells. It was. Prepared by lipofection method into 800 mL human embryonic kidney cell-derived FreeStyle 293-F strain (Invitrogen) suspended in FreeStyle 293 Expression Medium medium (Invitrogen) to a final cell density of 1 x 10 6 cells / mL Plasmids were introduced.
  • an animal expression plasmid prepared so that the heavy chain and the light chain of the 6RL # 9 antibody can be expressed, respectively, is transiently introduced into animal cells. It was. Prepared by lipofection method into 800 mL human embryonic kidney cell-derived FreeStyle 293-F strain (Invitrogen) suspended in FreeStyle 293 Expression Medium medium (Invitrogen) to a final cell density of 1 x 10 6 cells / mL Plas
  • Cells into which the plasmid was introduced were cultured for 5 days in a CO 2 incubator (37 ° C., 8% CO 2 , 90 rpm).
  • the antibody was purified from the culture supernatant obtained as described above according to a method known to those skilled in the art using rProtein A Sepharose TM Fast Flow (Amersham Biosciences). Absorbance at 280 nm of the purified antibody solution was measured using a spectrophotometer. The antibody concentration was calculated from the measured value using the extinction coefficient calculated by the PACE method (Protein Science (1995) 4, 2411-2423).
  • the 6RL # 9 antibody was concentrated to 21 mg / mL using an ultrafiltration membrane with a molecular weight fraction of 10000 MWCO.
  • the purified fraction obtained was concentrated to about 0.8 mL using a 5000 MWCO ultrafiltration membrane.
  • the concentrated solution was added to a gel filtration column Superdex 200 10/300 GL (GE Healthcare) equilibrated with 100 mM HEPES buffer (pH 8) containing 50 mM NaCl.
  • the purified 6RL # 9 antibody Fab fragment for crystallization was eluted from the column using the same buffer. All the column operations described above were performed at a low temperature of 6 to 7.5 ° C.
  • Crystallization drops were prepared by adding 0.2 ⁇ l of a dilution series solution in which the crystals were diluted 100-10000 times. X-ray diffraction data of a thin plate crystal obtained by allowing the crystallization drop to stand at 20 ° C. for 2 to 3 days was measured.
  • Crystallization drops were prepared by adding 0.2 ⁇ l of a dilution series solution of 6RL # 9 antibody Fab fragment crystals diluted 100-10000 fold. X-ray diffraction data of a thin plate crystal obtained by allowing the crystallization drop to stand at 20 ° C. for 2 to 3 days was measured.
  • CCD detector Quantum210r Using a CCD detector Quantum210r (ADSC) attached to the beam line, a total of 180 diffraction images were collected while rotating the crystal by 1 °. Lattice constant determination, diffraction spot indexing, and diffraction data processing were performed by the programs Xia2 (CCP4 Software Suite), XDS Package (Walfgang Kabsch) and Scala (CCP4 Software Suite). Finally, diffraction intensity data up to a resolution of 2.3 mm was obtained.
  • ADSC CCD detector Quantum210r
  • the structure of the 6RL # 9 antibody Fab fragment in the presence of Ca is determined by molecular replacement using the crystal structure analysis program Phaser (CCP4 Software Suite) to determine the crystal structure of the 6RL # 9 antibody Fab fragment in the presence of Ca. It was done. From the size of the obtained crystal lattice and the molecular weight of the Fab fragment of the 6RL # 9 antibody, it was predicted that the number of molecules in the asymmetric unit was one. Based on the homology on the primary sequence, the amino acid residues of the A chain 112-220 and B chain 116-218 extracted from the structure coordinates of PDB code: 1ZA6 are the model molecules for searching the CL and CH1 regions. It was said.
  • the amino acid residue part of B chain 1-115 extracted from the structure coordinates of PDB code: 1ZA6 was used as a model molecule for searching the VH region.
  • the amino acid residue of light chain 3-147 extracted from the structural coordinates of PDB code 2A9M was used as a model molecule for searching the VL region.
  • the initial structure model of the Fab fragment of the 6RL # 9 antibody was obtained by determining the orientation and position of each search model molecule in the crystal lattice from the rotation function and the translation function. By performing rigid body refinement to move the VH, VL, CH1, and CL domains to the initial structural model, the crystallographic reliability factor R value for the reflection data of 25-3.0 mm is 46.9%, Free R value Was 48.6%.
  • the structure refinement using the program Refmac5 (CCP4 Software Suite), and the coefficients of 2Fo-Fc and Fo-Fc calculated using the structure factor Fc and the phase calculated from the experimentally determined structure factor Fo and model
  • the model was refined by repeatedly modifying the model on the program Coot (Paul Emsley) while referring to the electron density map.
  • water molecules were incorporated into the model based on the electron density map with coefficients 2Fo-Fc and Fo-Fc, and refined using the program Refmac5 (CCP4 Software Suite).
  • the crystallographic reliability factor R value for the 3351 atom model was finally 20.9% and the Free R value was 27.7%.
  • the first selection from the constructed naive human antibody phage display library is the only selection of antibody fragments that have the ability to bind to the antigen (IL-6). Performed by concentration. IL-6 labeled with biotin was used as an antigen. Phage production was performed from E. coli holding the constructed phagemid for phage display. A phage library solution was obtained by diluting a population of phage precipitated by adding 2.5 M NaCl / 10% PEG to the culture solution of Escherichia coli where the phage was produced, with TBS.
  • the phage library solution was brought into contact with the antigen at room temperature for 60 minutes. Magnetic beads blocked with BSA were added, and the antigen-phage complex was allowed to bind to the magnetic beads for 15 minutes at room temperature. After the beads was washed three times with TBST) containing 1.2 mM CaCl 2 /TBST(1.2 mM CaCl 2 , further washed 2 times with TBS) containing 1 mL of 1.2 mM CaCl 2 /TBS(1.2 mM CaCl 2 It was done.
  • the beads to which 0.5 mL of 1 mg / mL trypsin had been added were suspended at room temperature for 15 minutes, and then the beads were immediately separated using a magnetic stand, and the phage solution was recovered.
  • the recovered phage solution was added to 10 mL of E. coli strain TG1 in the logarithmic growth phase (OD600 0.4-0.7).
  • E. coli was infected with the phage by gently stirring the E. coli at 37 ° C. for 1 hour. Infected E. coli were seeded on 225 mm x 225 mm plates.
  • a phage library solution was prepared by recovering the phages from the seeded E. coli culture solution.
  • phages were concentrated using Ca-dependent binding ability as an index.
  • the phage library was brought into contact with the antigen for 60 minutes at room temperature by adding 40 pmol of biotin-labeled antigen to the prepared phage library solution. Magnetic beads blocked with BSA were added, and the antigen-phage complex was allowed to bind to the magnetic beads for 15 minutes at room temperature. The beads were washed with 1 mL of 1.2 mM CaCl 2 / TBST and 1.2 mM CaCl 2 / TBS.
  • the beads to which 0.1 mL of 2 mM EDTA / TBS had been added were suspended at room temperature, and then the beads were immediately separated using a magnetic stand, and the phage solution was recovered.
  • the pIII protein of the phage that does not display Fab pIII protein derived from helper phage
  • Phages recovered from the trypsinized phage solution were added to 10 mL of E. coli strain TG1 in the logarithmic growth phase (OD600 0.4-0.7).
  • E. coli was infected with the phage by gently stirring the E. coli at 37 ° C. for 1 hour. Infected E. coli were seeded on 225 mm x 225 mm plates. Next, the phage library solution was recovered by recovering the phage from the seeded E. coli culture solution. Panning with Ca-dependent binding ability as an index was repeated three times.
  • phage-containing culture supernatant was recovered according to a conventional method (Methods Mol. Biol. (2002) 178, 133-145).
  • the culture supernatant containing phage to which BSA and CaCl2 were added so as to have a final concentration of 4% BSA and a concentration of 1.2 mM calcium ion was subjected to ELISA according to the following procedure. StreptaWell 96 microtiter plates (Roche) were coated overnight with 100 ⁇ L PBS containing biotin-labeled antigen.
  • Each well of the plate was washed with PBST to remove the antigen, and then the well was blocked with 250 ⁇ L of 4% BSA-TBS for 1 hour or longer.
  • the plate containing the culture supernatant prepared in each well from which 4% BSA-TBS has been removed is allowed to stand at 37 ° C for 1 hour to bind the antibody displaying the phage to the antigen present in each well. I let you.
  • a 6KC4-1 # 85 antibody having a Ca-dependent binding ability to IL-6 was obtained by performing phage ELISA using the isolated 96 clones.
  • the base sequence analysis of the gene amplified with specific primers was performed using an antibody fragment judged to have a binding ability to Ca-dependent antigen as a template.
  • the heavy chain variable region sequence of the 6KC4-1 # 85 antibody is described in SEQ ID NO: 8, and the light chain variable region sequence is described in SEQ ID NO: 43.
  • a DNA fragment in which the polynucleotide encoding the heavy chain variable region (SEQ ID NO: 8) of the 6KC4-1 # 85 antibody is linked to the polynucleotide encoding the IgG1-derived sequence by PCR is incorporated into an animal cell expression vector.
  • a vector expressing the heavy chain represented by SEQ ID NO: 44 was constructed.
  • a sequence in which the polynucleotide encoding the light chain variable region (SEQ ID NO: 43) of the 6KC4-1 # 85 antibody is linked to the polynucleotide encoding the constant region (SEQ ID NO: 42) of the natural Kappa chain by PCR.
  • a DNA fragment encoding the sequence represented by No. 45 was incorporated into an animal cell expression vector.
  • the sequence of the produced variant was confirmed by a method known to those skilled in the art.
  • the sequence of the produced variant was confirmed by a method known to those skilled in the art.
  • clone 6KC4-1 # 85 which was judged to be capable of binding to Ca-dependent antigen, was introduced into an animal cell expression plasmid.
  • Antibody expression was carried out using the following method. Human embryonic kidney cell-derived FreeStyle 293-F strain (Invitrogen) is suspended in FreeStyle 293 Expression Medium medium (Invitrogen) and sprinkled 3 mL into each well of a 6-well plate at a cell density of 1.33 x 10 6 cells / mL. Seeded. The prepared plasmid was introduced into cells by the lipofection method. Cultivation was carried out for 4 days in a CO 2 incubator (37 degrees, 8% CO 2 , 90 rpm).
  • the antibody was purified from the culture supernatant obtained above using rProtein A Sepharose TM Fast Flow (Amersham Biosciences) using methods known to those skilled in the art. Absorbance at 280 nm of the purified antibody solution was measured using a spectrophotometer. By using the extinction coefficient calculated by the PACE method, the antibody concentration was calculated from the obtained measured value (Protein Science (1995) 4, 2411-2423).
  • the Tm value of the Fab domain of the 6KC4-1 # 85 antibody is shown in Table 11. As shown in Table 11, since the Tm value of the Fab domain of the 6KC4-1 # 85 antibody varies depending on the calcium ion concentration, it is clear that the 6KC4-1 # 85 antibody binds to calcium. became.
  • 6KC4-1 # 85 antibody Identification of calcium ion binding site of 6KC4-1 # 85 antibody
  • 6KC4-1 # 85 antibody binds to calcium ion, but 6KC4-1 # 85 has the hVk5-2 sequence described below. It does not have a calcium binding motif.
  • modified heavy chains (6_H1-11 (SEQ ID NO: 46), 6_H1-12 (SEQ ID NO: 47), 6_H1-13 (SEQ ID NO: 48), 6_H1- substituted with an Ala (A) residue that cannot participate in chelation 14 (SEQ ID NO: 49), 6_H1-15 (SEQ ID NO: 50)) and modified light chains (6_L1-5 (SEQ ID NO: 51) and 6_L1-6 (SEQ ID NO: 52)) were produced.
  • the modified antibody was purified according to the method described in Example 4 from the culture fluid of animal cells into which the expression vector containing the modified antibody gene was introduced. The calcium binding of the purified modified antibody was measured according to the method described in Example 6. The measured results are shown in Table 12.
  • an antigen included in the antigen-binding molecule of the present invention is also a calcium-binding motif present in the vicinity of the loop root of the heavy chain CDR3 of the 6KC4-1 # 85 antibody, which was revealed from the calcium binding property of the modified antibody of the 6KC4-1 # 85 antibody. It became clear that it could be used as a calcium binding motif in the binding domain.
  • Polynucleotides encoding SEQ ID NO: 53 (Vk1), SEQ ID NO: 54 (Vk2), SEQ ID NO: 55 (Vk3), SEQ ID NO: 56 (Vk4) and SEQ ID NO: 6 (Vk5-2) are PCR methods.
  • the DNA fragment ligated with the polynucleotide encoding the constant region (SEQ ID NO: 42) of the natural Kappa chain was incorporated into an animal cell expression vector.
  • a polynucleotide encoding SEQ ID NO: 57 (Vk1), SEQ ID NO: 58 (Vk2), SEQ ID NO: 59 (Vk3), SEQ ID NO: 60 (Vk4) and SEQ ID NO: 61 (Vk5) is a PCR method.
  • a DNA fragment linked to a polynucleotide encoding a polypeptide lacking the C-terminal 2 amino acids of IgG1 (SEQ ID NO: 9) was incorporated into an animal cell expression vector. The sequence of the produced variant was confirmed by a method known to those skilled in the art.
  • Antibody expression was carried out using the following method. Human embryonic kidney cell-derived FreeStyle 293-F strain (Invitrogen) is suspended in FreeStyle 293 Expression Medium medium (Invitrogen) and sprinkled 3 mL into each well of a 6-well plate at a cell density of 1.33 x 10 6 cells / mL. Seeded. The prepared plasmid was introduced into cells by the lipofection method. Cultivation was carried out for 4 days in a CO 2 incubator (37 °, 8% CO 2 , 90 rpm).
  • the antibody was purified from the culture supernatant obtained above using rProtein A Sepharose TM Fast Flow (Amersham Biosciences) using methods known to those skilled in the art. Absorbance at 280 nm of the purified antibody solution was measured using a spectrophotometer. By using the extinction coefficient calculated by the PACE method, the antibody concentration was calculated from the obtained measured value (Protein Science (1995) 4, 2411-2423).
  • the Tm value of the Fab domain of the antibody containing the hVk1, hVk2, hVk3, and hVk4 sequences did not vary regardless of the calcium ion concentration in the solution containing the Fab domain.
  • the Tm value of the Fab domain of the antibody containing the hVk5 sequence varied depending on the calcium ion concentration in the antibody solution containing the Fab domain, indicating that the hVk5 sequence binds to the calcium ion.
  • the hVk5-2 sequence has a sequence in which an N-type sugar chain is added to the amino acid at position 20 (Kabat numbering). Since heterogeneity exists in the sugar chain added to the protein, it is desirable that no sugar chain is added from the viewpoint of the uniformity of the substance. Therefore, a modified hVk5-2_L65 (SEQ ID NO: 62) in which the Asn (N) residue at position 20 (Kabat numbering) was replaced with a Thr (T) residue was prepared. Amino acid substitutions were performed by methods known to those skilled in the art using QuikChange Site-Directed Mutagenesis Kit (Stratagene).
  • DNA encoding the modified hVk5-2_L65 was incorporated into an animal expression vector.
  • the animal expression vector into which the prepared modified hVk5-2_L65 DNA is incorporated is described in Reference Example 4 and the animal expression vector incorporated so that CIM_H (SEQ ID NO: 63) is expressed as a heavy chain. Both were introduced into animal cells in the same manner.
  • An antibody containing hVk5-2_L65 and CIM_H expressed in the introduced animal cells was purified by the method described in Reference Example 4.
  • the heterogeneity of the antibody containing the modified sequence hVk5-2_L65 obtained is less than that of the antibody containing the original hVk5-2 sequence subjected to the modification. It was analyzed using ion exchange chromatography. The method of ion exchange chromatography is shown in Table 15. As a result of the analysis, it was shown that hVk5-2_L65 in which the glycosylation site was modified as shown in FIG. 22 had reduced heterogeneity compared to the original hVk5-2 sequence.
  • the hVk5-2_L65 sequence is a sequence in which the amino acid at the glycosylation site existing in the framework of human Vk5-2 sequence is modified.
  • Reference Example 12 shows that calcium ions bind even when the glycosylation site is modified, it is generally desirable from the viewpoint of immunogenicity that the framework sequence is a germline sequence. Therefore, it was examined whether it is possible to replace the framework sequence of an antibody with a framework sequence of a germline sequence to which no sugar chain is added while maintaining the binding activity of calcium ions to the antibody. .
  • hVk5-2 sequence framework sequence modified to hVk1, hVk2, hVk3 and hVk4 sequences (CaVk1 (SEQ ID NO: 64), CaVk2 (SEQ ID NO: 65), CaVk3 (SEQ ID NO: 66, respectively) ),
  • a DNA fragment in which a polynucleotide encoding CaVk4 (SEQ ID NO: 67) is linked to a polynucleotide encoding the constant region (SEQ ID NO: 42) of the natural Kappa chain by the PCR method is an animal cell expression vector
  • the sequence of the generated variant was confirmed by a method known to those skilled in the art
  • Each of the plasmids prepared as described above incorporated a polynucleotide encoding CIM_H (SEQ ID NO: 63).
  • the plasmid was introduced into animal cells together with the plasmid by the method described in Reference Example 4.
  • the expressed desired antibody molecule was purified from the
  • the thermal stability of the Fab domain of each antibody modified to include a framework sequence of germline sequences other than the hVk5-2 sequence (hVk1, hVk2, hVk3, hVk4) and a CDR sequence of the hVK5-2 sequence. It was revealed that the heat denaturation temperature (Tm value) as an index is higher than the Tm value of the Fab domain of the antibody containing the original hVk5-2 sequence subjected to the modification. From this result, the antibody including the framework sequence of hVk1, hVk2, hVk3, and hVk4 and the CDR sequence of hVk5-2 sequence has a property of binding to calcium ions and is an excellent molecule from the viewpoint of thermal stability. Was found.
  • an antibody containing a mutant hVk5-2 sequence in which the Asp (D) or Glu (E) residue present in the CDR sequence of the hVk5-2 sequence is replaced with an Ala (A) residue binds to calcium ions. It was evaluated whether or not to do.
  • Amino acid substitution was performed by methods known to those skilled in the art, such as QuikChange Site-Directed Mutagenesis Kit (Stratagene), PCR or In fusion Advantage PCR cloning kit (TAKARA), and an expression vector for a modified light chain in which the amino acid was substituted was constructed. .
  • the base sequence of the obtained expression vector was determined by a method known to those skilled in the art. Transiently introducing the produced modified light chain expression vector together with the heavy chain CIM_H (SEQ ID NO: 63) expression vector into human fetal kidney cancer cell-derived HEK293H strain (Invitrogen) or FreeStyle293 cells (Invitrogen) To express the antibody.
  • the antibody was purified from the obtained culture supernatant by a method known to those skilled in the art using rProtein A Sepharose TM Fast Flow (GE Healthcare). The absorbance at 280 nm of the purified antibody solution was measured using a spectrophotometer. By using the extinction coefficient calculated by the PACE method, the antibody concentration was calculated from the obtained measured value (Protein Science (1995) 4, 241-2423).
  • the residues at positions 30, 31, 32, 50, and 92 (Kabat numbering) of the human germline hVk1 sequence are the 30, 30, and 32 positions of the hVk5-2 sequence.
  • Modified LfVk1_Ca (SEQ ID NO: 76) substituted at residues 50 and 92 (Kabat numbering). That is, it was determined whether or not an antibody containing an hVk1 sequence into which only these 5 residues in the hVk5-2 sequence were introduced could bind to calcium.
  • the modified product was produced in the same manner as in Reference Example 4.
  • Vk5-2 variant 1 SEQ ID NO: 78
  • Vk5-2 variant 2 classified as Vk5-2 (SEQ ID NO: 79) was obtained. These variants were also evaluated for calcium binding. DNA fragments of Vk5-2, Vk5-2 variant 1 and Vk5-2 variant 2 were respectively incorporated into animal cell expression vectors. The base sequence of the obtained expression vector was determined by a method known to those skilled in the art. Animal cell expression vectors into which DNA fragments of Vk5-2, Vk5-2 variant 1 and Vk5-2 variant 2 are incorporated are expressed in animals so that CIM_H (SEQ ID NO: 63) is expressed as a heavy chain.
  • CIM_H SEQ ID NO: 63
  • the vector was introduced into animal cells by the method described in Reference Example 13 and the antibody was purified.
  • the calcium ion binding activity of the purified antibody was evaluated.
  • the purified antibody is a solution of 20 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl, 2 mM CaCl 2 (pH 7.5) or 20 mM Tris-HCl, 150 mM NaCl (pH 7.5) (in Table 21, expressed as a calcium ion concentration of 0 mM) was subjected to a dialysis (EasySEP, TOMY) treatment using as an external solution. DSC measurement was performed from 20 ° C. to 115 ° C.
  • Table 21 shows the heat denaturation intermediate temperature (Tm value) of the Fab domain of each antibody calculated based on the denaturation curve of the obtained DSC.
  • the Tm value of the Fab domain of the antibody containing the sequences of Vk5-2, Vk5-2 variant 1 and Vk5-2 variant 2 varied depending on the calcium ion concentration in the antibody solution containing the Fab domain.
  • Antibodies with sequences classified as Vk5-2 were shown to bind calcium ions.
  • Calcium-binding motifs present in the sequences of Vk5-2 variant 1 and Vk5-2 variant 2 can also be suitably used as calcium-binding motifs that change the binding activity of the antigen-binding domain to the antigen according to the ion concentration conditions of the present invention. Became clear.

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Abstract

糖鎖受容体結合ドメインを含み、血漿中でのｐＨにおける抗原結合活性と比較して早期エンドソーム内でのｐＨにおける抗原結合活性が弱い抗原結合分子、ならびに当該抗原結合分子を含む医薬組成物、およびそれらの製造方法が開示される。本願発明の抗原結合分子を用いることにより、抗原の細胞内への取込が促進されるとともに、１分子の抗体が結合できる抗原の数を増加させることが可能になり、抗体の投与により血漿中の抗原減少を促進するとともに、抗体の薬物動態を長くすることが可能となる。

Description

糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原の血漿中からの消失を促進する抗原結合分子
関連する出願
　本出願は，日本特許出願2011-221400（２０１１年１０月５日出願）に基づく優先権を主張しており，この内容は本明細書に参照として取り込まれる。
技術分野
　本発明は、抗原の細胞内への取込が促進された抗原結合分子、血漿中の抗原濃度の減少を促進させることができる抗原結合分子、複数回抗原に結合できる抗原結合分子、薬物動態が改善された抗原結合分子、当該抗原結合分子を含む医薬組成物、およびそれらの製造方法に関する。
　抗体は血漿中での安定性が高く、副作用も少ないことから医薬品として注目されている。中でもIgG型の抗体医薬は多数上市されており、現在も数多くの抗体医薬が開発されている（非特許文献１、非特許文献２）。一方、第二世代の抗体医薬に適用可能な技術として様々な技術が開発されており、エフェクター機能、抗原結合能、薬物動態、安定性を向上させる、あるいは、免疫原性リスクを低減させる技術等が報告されている（非特許文献３）。抗体医薬は一般に投与量が非常に高いため、皮下投与製剤の作製が困難であること、製造コストが高いこと等が課題として考えられる。抗体医薬の投与量を低減させる方法として、抗体の薬物動態を向上する方法と、抗体と抗原の親和性（アフィニティー）を向上する方法が考えられる。
　抗体の薬物動態を向上させる方法として、定常領域の人工的なアミノ酸置換が報告されている（非特許文献４、５）。抗原結合能、抗原中和能を増強させる技術として、アフィニティーマチュレーション技術（非特許文献６）が報告されており、可変領域のCDR領域などのアミノ酸に変異を導入することで抗原への結合活性を増強することが可能である。抗原結合能の増強によりin　vitroの生物活性を向上させる、あるいは投与量を低減することが可能であり、さらにin　vivoでの薬効を向上させることも可能である（非特許文献７）。
　一方、抗体一分子あたりが中和できる抗原量はアフィニティーに依存し、アフィニティーを強くすることで少ない抗体量で抗原を中和することが可能であり、様々な方法で抗体のアフィニティーを強くすることが可能である（非特許文献６）。さらに抗原に共有結合的に結合し、アフィニティーを無限大にすることができれば一分子の抗体で一分子の抗原（２価の場合は２抗原）を中和することが可能である。しかし、これまでの方法では一分子の抗体で一分子の抗原（２価の場合は２抗原）の化学量論的な中和反応が限界であり、抗原量以下の抗体量で抗原を完全に中和することは不可能であった。つまり、アフィニティーを強くする効果には限界が存在していた（非特許文献９）。中和抗体の場合、その中和効果を一定期間持続させるためには、その期間に生体内で産生される抗原量以上の抗体量が投与される必要があり、上述の抗体の薬物動態向上、あるいは、アフィニティーマチュレーション技術だけでは、必要抗体投与量の低減には限界が存在していた。そのため、抗原量以下の抗体量で抗原の中和効果を目的期間持続するためには、1つの抗体で複数の抗原を中和する必要がある。これを達成する新しい方法として、最近、抗原に対してpH依存的に結合する抗体が報告された（特許文献１）。抗原に対して血漿中の中性条件下においては強く結合し、エンドソーム内の酸性条件下において抗原から解離するpH依存的抗原結合抗体はエンドソーム内で抗原から解離することが可能である。pH依存的抗原結合抗体は、抗原を解離した後に抗体がFcRnによって血漿中にリサイクルされると再び抗原に結合することが可能であるため、1つの抗体で複数の抗原に繰り返し結合することが可能となる。
　また、抗原の血漿中滞留性は、FcRnに結合してリサイクルされる抗体と比較して非常に短い。このような血漿中滞留性が長い抗体がその抗原に結合すると、抗体抗原複合体の血漿中滞留性は抗体と同様に長くなる。そのため、抗原は抗体と結合することにより、むしろ血漿中滞留性が長くなり、血漿中抗原濃度は上昇する。このような場合、抗体の抗原に対するアフィニティーを向上させても抗原の血漿中からの消失を促進することはできない。上述のpH依存的抗原結合抗体は、通常の抗体と比較して抗原の血漿中からの消失を促進する方法としても有効であることが報告されている（特許文献１）。
　このようにpH依存的抗原結合抗体は一つの抗体で複数の抗原に結合し、通常の抗体と比較して抗原の血漿中からの消失を促進することができるため、通常の抗体では成し得なかった作用を有する。しかしながら、これまでにこのpH依存的抗原結合抗体の抗原に繰り返し結合できる効果、および、抗原の血漿中からの消失を促進する効果をさらに向上させる抗体工学の手法は報告されていない。
　一方で、血漿中に存在する糖たんぱく質は、その糖鎖特異的な受容体に結合し、血漿中から消失する（非特許文献１０）。このとき糖たんぱく質は、細胞表面に存在する糖鎖受容体に結合して細胞内に取り込まれ、細胞内で糖鎖受容体と解離したのちリソソームによって分解されるが、糖鎖受容体は再び細胞表面にリサイクルされることが知られている。すなわち、この糖タンパク質と糖鎖受容体は、血漿中の中性条件下においては強く結合し、エンドソーム内の酸性条件下においては解離するpH依存的な結合能を有している（非特許文献１１、非特許文献１２）。このような糖タンパク質と糖鎖受容体のpH依存的な結合には、糖たんぱく質に付加された糖鎖が関与しており、そのような糖鎖と糖鎖受容体の例として、N結合型糖鎖のうち末端にガラクロースを有する糖鎖とアシアログリコプロテインレセプター（非特許文献１１）、末端にマンノースを有する糖鎖とマンノースレセプター（非特許文献１２）などが挙げられる。
　このようなN結合型糖鎖の性質から、抗体を含むバイオ医薬品において機能上不要なN結合型糖鎖を付与することは、その薬効あるいは血漿中滞留性維持の観点から好ましくないと考えられており（非特許文献１３、１４）、抗原の血漿中からの消失を促進する効果をさらに向上させる目的として実施された例はない。
　本明細書において引用される参考文献は以下のとおりである。これらの文献に記載される内容はすべて本明細書に参照として取り込まれる。これらの文献のいずれかが、本明細書に対する先行技術であると認めるものではない。
WO2009/125825
Clark　J　Rosensweig,　Laura　B　Faden　&　Matthew　C　Dewitz,　Nature　Biotechnology　(2005)　23,　1073　-　1078 Pavlou　AK,　Belsey　MJ.,　Eur　J　Pharm　Biopharm.　(2005)　59　(3),　389-96 Kim　SJ,　Park　Y,　Hong　HJ.,　Mol　Cells.　(2005)　20　(1),　17-29 Hinton　PR,　Xiong　JM,　Johlfs　MG,　Tang　MT,　Keller　S,　Tsurushita　N.,　J　Immunol.　(2006)　176　(1),　346-56 Ghetie　V,　Popov　S,　Borvak　J,　Radu　C,　Matesoi　D,　Medesan　C,　Ober　RJ,　Ward　ES.,　Nat　Biotechnol.　(1997)　15　(7),　637-40 Rajpal　A,　Beyaz　N,　Haber　L,　Cappuccilli　G,　Yee　H,　Bhatt　RR,　Takeuchi　T,　Lerner　RA,　Crea　R.,　Proc　Natl　Acad　Sci　U　S　A.　(2005)　102　(24),　8466-71 Wu　H,　Pfarr　DS,　Johnson　S,　Brewah　YA,　Woods　RM,　Patel　NK,　White　WI,　Young　JF,　Kiener　PA.,　J　Mol　Biol.　(2007)　368,　652-665 Hanson　CV,　Nishiyama　Y,　Paul　S.,　(2005)　16　(6),　631-6 Rathanaswami　P,　Roalstad　S,　Roskos　L,　Su　QJ,　Lackie　S,　Babcook　J.,　Biochem　Biophys　Res　Commun.　(2005)　334　(4),　1004-13 Spiess　M.,　Biochemistry　(1990)　29　(43),　10009-18 Wragg　S.　and　Drickamer　K.,　J　Biol　Chem　(1999)　274　(50),　35400-6 Kim　JJ,　Olson　LJ,　Dahms　NM.,　Curr　Opin　Struct　Biol.　(2009)　19　(5),　534-42 Coloma　MJ,　Trinh　RK,　Martinez　AR,　Morrison　SL.,　J　Immunol　(1999)　162,　2162-2170 Igawa　T,　Tsunoda　H,　Kuramochi　T,　Sampei　Z,　Ishii　S,　Hattori　K.　MAbs.　(2011)　3,　243-52
　本発明者らは、抗原結合活性を有する抗原結合分子による抗原の細胞内への取込を促進させる方法、抗原結合分子が抗原に複数回結合する方法、抗原結合分子の投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させる方法、抗原結合分子の血漿中滞留性を改善する方法について鋭意研究を行った。その結果、本発明者らは、抗原結合ドメイン、FcRn特にヒトFcRnに対する結合ドメインと糖鎖受容体に結合するドメインを有し、その糖鎖受容体への結合がエンドソーム内のイオン濃度の条件において血漿中のイオン濃度の条件に比較して弱い結合能を有する抗原結合分子は、抗原の細胞内への取込を促進できること、また、血漿中でのイオン濃度の条件における抗原結合活性と比較して早期エンドソーム内でのイオン濃度の条件における抗原結合活性が弱い抗原結合ドメインを有する抗原結合分子が、抗原結合分子による抗原の細胞内への取込をさらに促進できること、一分子の抗原結合分子により結合できる抗原の数を増加できること、抗原結合分子の投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させること、抗原結合分子の薬物動態を改善できることを見出した。
　すなわち本発明は、抗原結合分子による抗原の細胞内への取込を促進させる方法、一分子の抗原結合分子により結合できる抗原の数を増加させる方法、その投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させる方法、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法、抗原の細胞内への取込が促進された抗原結合分子、結合できる抗原の数が増加した抗原結合分子、その投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させることができる抗原結合分子、薬物動態が向上した抗原結合分子、当該抗原結合分子を含む医薬組成物、およびそれらの製造方法などに関し、より具体的には、
〔１〕以下の工程を含む抗原結合分子の製造方法、
(a)　抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインを含む抗原結合分子のポリペプチド配列を提供する工程
(b)　当該ポリペプチド配列中における糖鎖受容体結合ドメインのモチーフの候補となるアミノ酸配列を同定する工程
(c)　(b)で同定されたアミノ酸配列と少なくとも１つのアミノ酸が異なるアミノ酸配列を含む糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを設計する工程
(d)　(c)で設計された糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを含む抗原結合分子のポリペプチドをコードする遺伝子を作製する工程
(e)　(d)で得られた遺伝子によって形質転換された宿主細胞の培養液から抗原結合分子を回収する工程
〔２〕(e)で得られた抗原結合分子に対してさらに酵素を用いて処理する工程を含む〔１〕の製造方法、
〔３〕前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする〔１〕または〔２〕に記載の製造方法、
〔４〕前記イオン濃度の条件がpHの条件である〔３〕に記載の製造方法、
〔５〕前記抗原結合ドメインが、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い〔４〕に記載の製造方法、
〔６〕前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸を側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸で置換するか又は抗原結合ドメインに側鎖のpKaが4.0-8.0である少なくとも１つのアミノ酸を挿入することにより、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い抗原結合ドメインを提供することを含む、〔５〕に記載の方法、
〔７〕前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である〔３〕に記載の製造方法、
〔８〕前記抗原結合ドメインが、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い〔７〕に記載の製造方法、
〔９〕前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸をカルシウム結合モチーフで置換するか又は抗原結合ドメインにカルシウム結合モチーフを挿入することにより、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い抗原結合ドメインを提供することを含む、〔８〕に記載の方法、
〔１０〕前記抗原結合ドメインが抗体の可変領域を含む〔１〕から〔９〕のいずれかに記載の方法、
〔１１〕前記FcRn結合ドメインが抗体のFc領域を含む〔１〕から〔１０〕のいずれかに記載の方法、
〔１２〕前記抗体がIgG抗体である〔１１〕に記載の方法、
〔１３〕前記IgG抗体がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4のいずれかである〔１２〕に記載の方法、
〔１４〕前記糖鎖受容体結合ドメインの糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする〔１〕から〔１２〕のいずれかに記載の方法、
〔１５〕前記イオン濃度の条件がpHの条件である〔１４〕に記載の方法、
〔１６〕前記糖鎖受容体結合ドメインの、pH酸性域の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い〔１〕から〔１５〕のいずれかに記載の方法、
〔１７〕前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である〔１４〕に記載の方法、
〔１８〕前記糖鎖受容体結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い〔１７〕に記載の方法、
〔１９〕前記糖鎖受容体結合ドメインが糖鎖である〔１〕から〔１８〕のいずれかに記載の方法、
〔２０〕前記糖鎖がO結合型糖鎖である〔１９〕に記載の方法、
〔２１〕前記糖鎖がN結合型糖鎖である〔１９〕に記載の方法、
〔２２〕前記糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを設計することが、N結合型糖鎖が付加するモチーフを設計することを含む〔２１〕に記載の方法、
〔２３〕前記N結合型糖鎖の末端がガラクトースを含む〔２１〕または〔２２〕に記載の方法、
〔２４〕前記N結合型糖鎖の末端が３つ以上のガラクトースを含む〔２３〕に記載の方法、
〔２５〕前記糖鎖受容体がアシアログライコプロテインレセプターである〔２１〕から〔２４〕のいずれかに記載の方法、
〔２６〕前記N結合型糖鎖の末端がマンノースを含む〔２１〕または〔２２〕に記載の方法、
〔２７〕前記糖鎖受容体がマンノースレセプターである〔２６〕に記載の方法、
〔２８〕〔１〕から〔２７〕のいずれかに記載の方法により作製された抗原結合分子、
〔２９〕FcRn結合ドメイン、抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化する抗原結合ドメイン、および糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化するひとつ以上の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子、
〔３０〕前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がpHの条件によって変化する〔２９〕に記載の抗原結合分子、
〔３１〕前記抗原結合ドメインの、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い〔３０〕に記載の抗原結合分子、
〔３２〕前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸に少なくとも１つの側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸が含まれている、〔３１〕に記載の抗原結合分子、
〔３３〕前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がカルシウムイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする〔２９〕に記載の抗原結合分子、
〔３４〕前記抗原結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い〔３３〕に記載の抗原結合分子、
〔３５〕前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸にカルシウム結合モチーフが含まれる、〔３４〕に記載の抗原結合分子、
〔３６〕前記抗原結合ドメインが抗体の可変領域を含む〔２９〕から〔３５〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔３７〕前記FcRn結合ドメインが抗体のFc領域を含む〔２９〕から〔３６〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔３８〕前記抗体がIgG抗体である〔３７〕に記載の抗原結合分子、
〔３９〕前記IgG抗体がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4のいずれかである〔３８〕に記載の抗原結合分子、
〔４０〕前記糖鎖受容体結合ドメインの糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする〔２９〕から〔３９〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔４１〕前記イオン濃度の条件がpHの条件である〔４０〕に記載の抗原結合分子、
〔４２〕前記糖鎖受容体結合ドメインの、pH酸性域の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い〔４１〕に記載の抗原結合分子、
〔４３〕前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である〔４０〕に記載の抗原結合分子、
〔４４〕前記糖鎖受容体結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い〔４３〕に記載の抗原結合分子、
〔４５〕前記糖鎖受容体結合ドメインが糖鎖である〔２９〕から〔４４〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔４６〕前記糖鎖がO結合型糖鎖またはN結合型糖鎖である〔４５〕に記載の抗原結合分子、
〔４７〕前記糖鎖受容体結合ドメインにN結合型糖鎖が結合するモチーフが含まれる〔４６〕に記載の抗原結合分子、
〔４８〕前記N結合型糖鎖の末端がガラクトースを含む〔４６〕または〔４７〕に記載の抗原結合分子、
〔４９〕前記N結合型糖鎖の末端が3つ以上の末端のガラクトースを含む〔４８〕に記載の抗原結合分子、
〔５０〕前記糖鎖受容体がアシアログライコプロテインレセプターである〔４７〕から〔４９〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔５１〕前記N結合型糖鎖の末端がマンノースを含む、〔４６〕または〔４７〕に記載の抗原結合分子、
〔５２〕前記糖鎖受容体がマンノースレセプターである〔４６〕または〔４７〕に記載の抗原結合分子、
〔５３〕前記抗原結合分子が抗体であることを特徴とする、〔２８〕から〔５２〕に記載の抗原結合分子、
〔５４〕前記糖鎖受容体結合ドメインが抗原結合ドメインに含まれる〔２８〕から〔５３〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔５５〕前記糖鎖受容体結合ドメインがFcRn結合ドメインに含まれる、〔２８〕から〔５３〕のいずれかに記載の抗原結合分子、
〔５６〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を含む医薬組成物、
〔５７〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子を当該細胞の細胞内へ取り込ませる方法、
〔５８〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子に結合した抗原を当該細胞の細胞内へ取り込ませる方法、
〔５９〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法、
〔６０〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、細胞外に存在する抗原を減少させる方法、
〔６１〕細胞外が血漿である〔５８〕に記載の方法、
〔６２〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内で接触させることを含む、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法、
〔６３〕〔２８〕から〔５５〕のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、細胞の細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の抗原結合分子からの解離を促進させる方法、
〔６４〕抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対するひとつ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、下記のいずれかから選択される方法、
(i)　生体内または生体外における当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内への抗原結合分子の取込を促進するための方法
(ii)　生体内または生体外における当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内への抗原結合分子に結合した抗原の取込を促進するための方法
(iii)　生体内または生体外において一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させるための方法
(iv)　抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法
(v)　抗原結合分子の薬物動態を向上させるための方法、または
(vi)　細胞外で結合した抗原の抗原結合分子からの解離を促進させるための方法
〔６５〕前記抗原結合分子の抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化する〔６４〕に記載の方法、
〔６６〕前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がpHの条件によって変化する〔６４〕に記載の方法、
〔６７〕前記抗原結合ドメインの、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い〔６６〕に記載の方法、
〔６８〕前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸に側鎖のpKaが4.0-8.0である少なくとも１つのアミノ酸含まれている〔６７〕に記載の方法、
〔６９〕前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がカルシウムイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする〔６４〕に記載の方法、
〔７０〕前記抗原結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い〔６９〕に記載の方法、
〔７１〕前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸にカルシウム結合モチーフが含まれる、〔７０〕に記載の方法、
〔７２〕前記抗原結合ドメインが抗体の可変領域を含む〔６４〕から〔７１〕のいずれかに記載の方法、
〔７３〕前記FcRn結合ドメインが抗体のFc領域を含む〔６４〕から〔７２〕のいずれかに記載の方法、
〔７４〕前記抗体がIgG抗体である〔７３〕に記載の方法、
〔７５〕前記IgG抗体がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4のいずれかである〔７４〕に記載の方法、
〔７６〕前記糖鎖受容体結合ドメインの糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする〔６４〕から〔７５〕のいずれかに記載の方法、
〔７７〕前記イオン濃度の条件がpHの条件である〔７６〕に記載の方法、
〔７８〕前記糖鎖受容体結合ドメインの、pH酸性域の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い〔７６〕に記載の方法、
〔７９〕前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である〔７６〕に記載の方法、
〔８０〕前記糖鎖受容体結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い〔７９〕に記載の方法、
〔８１〕前記糖鎖受容体結合ドメインが糖鎖である〔６４〕から〔８０〕のいずれかに記載の方法、
〔８２〕前記糖鎖がO結合型糖鎖である〔８１〕に記載の方法、
〔８３〕前記糖鎖がN結合型糖鎖である〔８１〕に記載の方法、
〔８４〕前記糖鎖受容体結合ドメインにN結合型糖鎖が結合するモチーフが含まれる〔８３〕に記載の方法、
〔８５〕前記N結合型糖鎖の末端がガラクトースを含む〔８３〕または〔８４〕に記載の方法、
〔８６〕前記N結合型糖鎖の末端が3つ以上の末端のガラクトースを含む〔８５〕に記載の方法、
〔８７〕前記糖鎖受容体がアシアログライコプロテインレセプターである〔８４〕から〔８６〕のいずれかに記載の方法、
〔８８〕前記N結合型糖鎖の末端がマンノースを含む、〔８３〕または〔８４〕に記載の方法、
〔８９〕前記糖鎖受容体がマンノースレセプターである〔８３〕または〔８４〕に記載の方法、
〔９０〕前記抗原結合分子が抗体であることを特徴とする、〔６４〕から〔８９〕に記載の方法、
〔９１〕前記糖鎖受容体結合ドメインが抗原結合ドメインに含まれる〔６４〕から〔９０〕のいずれかに記載の方法、
〔９２〕Fc領域に前記糖鎖受容体結合ドメインがFcRn結合ドメインに含まれる〔６４〕から〔９０〕のいずれかに記載の方法、
を提供する。
IgG抗体分子がエンドソーム内で可溶型抗原から解離することで、抗原の消失を加速させ、再度新たな抗原に結合することを示す模式図である。 IgG抗体分子が血管内で糖鎖受容体と結合し細胞内に取り込まれ、エンドソーム内で溶鎖受容体とともに可溶型抗原から解離することで、抗原の消失を加速させ、再度新たな抗原に結合することを示す模式図である。 還元SDS-PAGEにより重鎖と軽鎖を検出した図である。 neuraminidase処理前後の陰イオン交換クロマトグラフィーのクロマトグラムを示す図である。 還元したGL-M111をRP-LC/ESI-MS分析し、軽鎖に付加したN結合型糖鎖を観察したマスクロマトグラムを示す図である。 陰イオン交換クロマトグラフィーによりneuraminidase活性を観察した図である。 定常領域をIgG1に戻したサンプルを還元SDS-PAGEにより重鎖と軽鎖を検出した図である。 ノーマルマウスにおける抗体の血漿中濃度推移を示す図である。 ノーマルマウスにおける可溶型ヒトIL-6レセプターの血漿中濃度推移を示す図である。 ノーマルマウスにおける抗体の血漿中濃度推移を示す図である。 ノーマルマウスにおける可溶型ヒトIL-6レセプターの血漿中濃度推移を示す図である。 還元SDS-PAGEにより重鎖と軽鎖を検出した図である。 還元したGL5-G1＿kif+をRP-LC/ESI-MS分析し、軽鎖に付加したN結合型糖鎖を観察したマスクロマトグラムを示す図である。 ノーマルマウスにおける抗体の血漿中濃度推移を示す図である。 ノーマルマウスにおける可溶型ヒトIL-6レセプターの血漿中濃度推移を示す図である。 H54/L28-IgG1のCa2+　2mM　およびCa2+　3μM　における可溶型ヒトIL-6レセプターへの相互作用を示すBiacoreセンサーグラムを示す図である。 FH4-IgG1のCa2+　2mM　およびCa2+　3μM　における可溶型ヒトIL-6レセプターへの相互作用を示すBiacoreセンサーグラムを示す図である。 6RL#9-IgG1のCa2+　2mM　およびCa2+　3μM　における可溶型ヒトIL-6レセプターへの相互作用を示すBiacoreセンサーグラムを示す図である。 H54/L28-IgG1、FH4-IgG1、および、6RL#9-IgG1のノーマルマウス血漿中抗体濃度推移を示す図である。 H54/L28-IgG1、FH4-IgG1、および、6RL#9-IgG1のノーマルマウス血漿中可溶型ヒトIL-6レセプター（hsIL-6R）濃度推移を示す図である。 X線結晶構造解析で決定された6RL#9抗体のFabフラグメントの重鎖CDR3の構造を示す図である。 ヒトVk5-2配列を含む抗体と、ヒトVk5-2配列中の糖鎖付加配列が改変されたh　Vk5-2＿L65配列を含む抗体のイオン交換クロマトグラムである。実線はヒトVk5-2配列を含む抗体（重鎖：CIM＿H、配列番号：６３および軽鎖：hVk5-2、配列番号：６と配列番号：４２の融合分子）のクロマトグラム、破線はhVk5-2＿L65配列をもつ抗体（重鎖：CIM＿H（配列番号：６３）、軽鎖：hVk5-2＿L65（配列番号６２））のクロマトグラムを表す。
　以下の定義および詳細な説明は、本明細書において説明する本発明の理解を容易にするために提供される。
アミノ酸
　本明細書において、たとえば、Ala/A、Leu/L、Arg/R、Lys/K、Asn/N、Met/M、Asp/D、Phe/F、Cys/C、Pro/P、Gln/Q、Ser/S、Glu/E、Thr/T、Gly/G、Trp/W、His/H、Tyr/Y、Ile/I、Val/Vと表されるように、アミノ酸は1文字コードまたは3文字コード、またはその両方で表記されている。
および/または
　本明細書において、「および/または」の用語の意義は、「および」と「または」が適宜組み合わされたあらゆる組合せを含む。具体的には、例えば「33位、55位、および/または96位のアミノ酸が置換されている」とは以下のアミノ酸の改変のバリエーションが含まれる；
(a) 33位、(b) 55位、(c) 96位、(d) 33位および55位、(e) 33位および96位、(f) 55位および96位、(g) 33位および55位および96位。
抗原
　本明細書において「抗原」は抗原結合ドメインが結合するエピトープを含む限りその構造は特定の構造に限定されない。別の意味では、抗原は無機物でもあり得るし有機物でもあり得る。本発明の方法によって薬物動態を向上させる抗原結合分子の例としては、例えば、受容体蛋白質（膜結合型受容体、可溶型受容体）や細胞表面マーカーなどの膜抗原を認識する抗原結合分子、サイトカインなどの可溶型抗原を認識する抗原結合分子などが好適に挙げられる。抗原としては下記のような分子；17-IA、4-1BB、4Dc、6-ケト-PGF1a、8-イソ-PGF2a、8-オキソ-dG、A1　アデノシン受容体、A33、ACE、ACE-2、アクチビン、アクチビンA、アクチビンAB、アクチビンB、アクチビンC、アクチビンRIA、アクチビンRIA　ALK-2、アクチビンRIB　ALK-4、アクチビンRIIA、アクチビンRIIB、ADAM、ADAM10、ADAM12、ADAM15、ADAM17/TACE、ADAM8、ADAM9、ADAMTS、ADAMTS4、ADAMTS5、アドレシン、aFGF、ALCAM、ALK、ALK-1、ALK-7、アルファ-1-アンチトリプシン、アルファ－V/ベータ-1アンタゴニスト、ANG、Ang、APAF-1、APE、APJ、APP、APRIL、AR、ARC、ART、アルテミン、抗Id、ASPARTIC、心房性ナトリウム利尿因子、av/b3インテグリン、Axl、b2M、B7-1、B7-2、B7-H、B-リンパ球刺激因子（BlyS）、BACE、BACE-1、Bad、BAFF、BAFF-R、Bag-1、BAK、Bax、BCA-1、BCAM、Bcl、BCMA、BDNF、b-ECGF、bFGF、BID、Bik、BIM、BLC、BL-CAM、BLK、BMP、BMP-2　BMP-2a、BMP-3　オステオゲニン（Osteogenin）、BMP-4　BMP-2b、BMP-5、BMP-6　Vgr-1、BMP-7（OP-1）、BMP-8（BMP-8a、OP-2）、BMPR、BMPR-IA（ALK-3）、BMPR-IB（ALK-6）、BRK-2、RPK-1、BMPR-II（BRK-3）、BMP、b-NGF、BOK、ボンベシン、骨由来神経栄養因子、BPDE、BPDE-DNA、BTC、補体因子3（C3）、C3a、C4、C5、C5a、C10、CA125、CAD-8、カルシトニン、cAMP、癌胎児35性抗原（CEA）、癌関連抗原、カテプシンA、カテプシンB、カテプシンC/DPPI、カテプシンD、カテプシンE、カテプシンH、カテプシンL、カテプシンO、カテプシンS、カテプシンV、カテプシンX/Z/P、CBL、CCI、CCK2、CCL、CCL1、CCL11、CCL12、CCL13、CCL14、CCL15、CCL16、CCL17、CCL18、CCL19、CCL2、CCL20、CCL21、CCL22、CCL23、CCL24、CCL25、CCL26、CCL27、CCL28、CCL3、CCL4、CCL5、CCL6、CCL7、CCL8、CCL9/10、CCR、CCR1、CCR10、CCR10、CCR2、CCR3、CCR4、CCR5、CCR6、CCR7、CCR8、CCR9、CD1、CD2、CD3、CD3E、CD4、CD5、CD6、CD7、CD8、CD10、CD11a、CD11b、CD11c、CD13、CD14、CD15、CD16、CD18、CD19、CD20、CD21、CD22、CD23、CD25、CD27L、CD28、CD29、CD30、CD30L、CD32、CD33（p67タンパク質）、CD34、CD38、CD40、CD40L、CD44、CD45、CD46、CD49a、CD52、CD54、CD55、CD56、CD61、CD64、CD66e、CD74、CD80（B7-1）、CD89、CD95、CD123、CD137、CD138、CD140a、CD146、CD147、CD148、CD152、CD164、CEACAM5、CFTR、cGMP、CINC、ボツリヌス菌毒素、ウェルシュ菌毒素、CKb8-1、CLC、CMV、CMV　UL、CNTF、CNTN-1、COX、C-Ret、CRG-2、CT-1、CTACK、CTGF、CTLA-4、CX3CL1、CX3CR1、CXCL、CXCL1、CXCL2、CXCL3、CXCL4、CXCL5、CXCL6、CXCL7、CXCL8、CXCL9、CXCL10、CXCL11、CXCL12、CXCL13、CXCL14、CXCL15、CXCL16、CXCR、CXCR1、CXCR2、CXCR3、CXCR4、CXCR5、CXCR6、サイトケラチン腫瘍関連抗原、DAN、DCC、DcR3、DC-SIGN、補体制御因子（Decay　accelerating　factor）、des（1-3）-IGF-I（脳IGF-1）、Dhh、ジゴキシン、DNAM-1、Dnase、Dpp、DPPIV/CD26、Dtk、ECAD、EDA、EDA-A1、EDA-A2、EDAR、EGF、EGFR（ErbB-1）、EMA、EMMPRIN、ENA、エンドセリン受容体、エンケファリナーゼ、eNOS、Eot、エオタキシン1、EpCAM、エフリンB2/EphB4、EPO、ERCC、E-セレクチン、ET-1、ファクターIIa、ファクターVII、ファクターVIIIc、ファクターIX、線維芽細胞活性化タンパク質（FAP）、Fas、FcR1、FEN-1、フェリチン、FGF、FGF-19、FGF-2、FGF3、FGF-8、FGFR、FGFR-3、フィブリン、FL、FLIP、Flt-3、Flt-4、卵胞刺激ホルモン、フラクタルカイン、FZD1、FZD2、FZD3、FZD4、FZD5、FZD6、FZD7、FZD8、FZD9、FZD10、G250、Gas6、GCP-2、GCSF、GD2、GD3、GDF、GDF-1、GDF-3（Vgr-2）、GDF-5（BMP-14、CDMP-1）、GDF-6（BMP-13、CDMP-2）、GDF-7（BMP-12、CDMP-3）、GDF-8（ミオスタチン）、GDF-9、GDF-15（MIC-1）、GDNF、GDNF、GFAP、GFRa-1、GFR-アルファ1、GFR-アルファ2、GFR-アルファ3、GITR、グルカゴン、Glut4、糖タンパク質IIb/IIIa（GPIIb/IIIa）、GM-CSF、gp130、gp72、GRO、成長ホルモン放出因子、ハプテン（NP-capまたはNIP-cap）、HB-EGF、HCC、HCMV　gBエンベロープ糖タンパク質、HCMV　gHエンベロープ糖タンパク質、HCMVUL、造血成長因子（HGF）、Hep　B　gp120、ヘパラナーゼ、Her2、Her2/neu（ErbB-2）、Her3（ErbB-3）、Her4（ErbB-4）、単純ヘルペスウイルス（HSV）gB糖タンパク質、HSV　gD糖タンパク質、HGFA、高分子量黒色腫関連抗原（HMW-MAA）、HIV　gp120、HIV　IIIB　gp　120　V3ループ、HLA、HLA-DR、HM1.24、HMFG　PEM、HRG、Hrk、ヒト心臓ミオシン、ヒトサイトメガロウイルス（HCMV）、ヒト成長ホルモン（HGH）、HVEM、I-309、IAP、ICAM、ICAM-1、ICAM-3、ICE、ICOS、IFNg、Ig、IgA受容体、IgE、IGF、IGF結合タンパク質、IGF-1R、IGFBP、IGF-I、IGF-II、IL、IL-1、IL-1R、IL-2、IL-2R、IL-4、IL-4R、IL-5、IL-5R、IL-6、IL-6R、IL-8、IL-9、IL-10、IL-12、IL-13、IL-15、IL-18、IL-18R、IL-23、インターフェロン（INF）-アルファ、INF-ベータ、INF-ガンマ、インヒビン、iNOS、インスリンA鎖、インスリンB鎖、インスリン様増殖因子1、インテグリンアルファ2、インテグリンアルファ3、インテグリンアルファ4、インテグリンアルファ4/ベータ1、インテグリンアルファ4/ベータ7、インテグリンアルファ5（アルファV）、インテグリンアルファ5/ベータ1、インテグリンアルファ5/ベータ3、インテグリンアルファ6、インテグリンベータ1、インテグリンベータ2、インターフェロンガンマ、IP-10、I-TAC、JE、カリクレイン2、カリクレイン5、カリクレイン6、カリクレイン11、カリクレイン12、カリクレイン14、カリクレイン15、カリクレインL1、カリクレインL2、カリクレインL3、カリクレインL4、KC、KDR、ケラチノサイト増殖因子（KGF）、ラミニン5、LAMP、LAP、LAP（TGF-1）、潜在的TGF-1、潜在的TGF-1　bp1、LBP、LDGF、LECT2、レフティ、ルイス－Y抗原、ルイス－Y関連抗原、LFA-1、LFA-3、Lfo、LIF、LIGHT、リポタンパク質、LIX、LKN、Lptn、L-セレクチン、LT-a、LT-b、LTB4、LTBP-1、肺表面、黄体形成ホルモン、リンホトキシンベータ受容体、Mac-1、MAdCAM、MAG、MAP2、MARC、MCAM、MCAM、MCK-2、MCP、M-CSF、MDC、Mer、METALLOPROTEASES、MGDF受容体、MGMT、MHC（HLA-DR）、MIF、MIG、MIP、MIP-1-アルファ、MK、MMAC1、MMP、MMP-1、MMP-10、MMP-11、MMP-12、MMP-13、MMP-14、MMP-15、MMP-2、MMP-24、MMP-3、MMP-7、MMP-8、MMP-9、MPIF、Mpo、MSK、MSP、ムチン（Muc1）、MUC18、ミュラー管抑制物質、Mug、MuSK、NAIP、NAP、NCAD、N-Cアドヘリン、NCA　90、NCAM、NCAM、ネプリライシン、ニューロトロフィン-3、-4、または-6、ニュールツリン、神経成長因子（NGF）、NGFR、NGF－ベータ、nNOS、NO、NOS、Npn、NRG-3、NT、NTN、OB、OGG1、OPG、OPN、OSM、OX40L、OX40R、p150、p95、PADPr、副甲状腺ホルモン、PARC、PARP、PBR、PBSF、PCAD、P-カドヘリン、PCNA、PDGF、PDGF、PDK-1、PECAM、PEM、PF4、PGE、PGF、PGI2、PGJ2、PIN、PLA2、胎盤性アルカリホスファターゼ（PLAP）、PlGF、PLP、PP14、プロインスリン、プロレラキシン、プロテインC、PS、PSA、PSCA、前立腺特異的膜抗原（PSMA）、PTEN、PTHrp、Ptk、PTN、R51、RANK、RANKL、RANTES、RANTES、レラキシンA鎖、レラキシンB鎖、レニン、呼吸器多核体ウイルス（RSV）F、RSV　Fgp、Ret、リウマイド因子、RLIP76、RPA2、RSK、S100、SCF/KL、SDF-1、SERINE、血清アルブミン、sFRP-3、Shh、SIGIRR、SK-1、SLAM、SLPI、SMAC、SMDF、SMOH、SOD、SPARC、Stat、STEAP、STEAP-II、TACE、TACI、TAG-72（腫瘍関連糖タンパク質－72）、TARC、TCA-3、T細胞受容体（例えば、T細胞受容体アルファ/ベータ）、TdT、TECK、TEM1、TEM5、TEM7、TEM8、TERT、睾丸PLAP様アルカリホスファターゼ、TfR、TGF、TGF-アルファ、TGF-ベータ、TGF-ベータPan　Specific、TGF-ベータRI（ALK-5）、TGF-ベータRII、TGF-ベータRIIb、TGF-ベータRIII、TGF-ベータ1、TGF-ベータ2、TGF-ベータ3、TGF-ベータ4、TGF-ベータ5、トロンビン、胸腺Ck-1、甲状腺刺激ホルモン、Tie、TIMP、TIQ、組織因子、TMEFF2、Tmpo、TMPRSS2、TNF、TNF-アルファ、TNF-アルファベータ、TNF-ベータ2、TNFc、TNF-RI、TNF-RII、TNFRSF10A（TRAIL　R1　Apo-2、DR4）、TNFRSF10B（TRAIL　R2　DR5、KILLER、TRICK-2A、TRICK-B）、TNFRSF10C（TRAILR3　DcR1、LIT、TRID）、TNFRSF10D（TRAIL　R4　DcR2、TRUNDD）、TNFRSF11A（RANK　ODF　R、TRANCE　R）、TNFRSF11B（OPG　OCIF、TR1）、TNFRSF12（TWEAK　RFN14）、TNFRSF13B（TACI）、TNFRSF13C（BAFF　R）、TNFRSF14（HVEM　ATAR、HveA、LIGHT　R、TR2）、TNFRSF16（NGFRp75NTR）、TNFRSF17（BCMA）、TNFRSF18（GITR　AITR）、TNFRSF19（TROY　TAJ、TRADE）、TNFRSF19L（RELT）、TNFRSF1A（TNF　RI　CD120a、p55-60）、TNFRSF1B（TNF　RII　CD120b、p75-80）、TNFRSF26（TNFRH3）、TNFRSF3（LTbR　TNF　RIII、TNFC　R）、TNFRSF4（OX40ACT35、TXGP1　R）、TNFRSF5（CD40　p50）、TNFRSF6（Fas　Apo-1、APT1、CD95）、TNFRSF6B（DcR3　M68、TR6）、TNFRSF7（CD27）、TNFRSF8（CD30）、TNFRSF9（4-1BB　CD137、ILA）、TNFRSF21（DR6）、TNFRSF22（DcTRAIL　R2　TNFRH2）、TNFRST23（DcTRAIL　R1　TNFRH1）、TNFRSF25（DR3　Apo-3、LARD、TR-3、TRAMP、WSL-1）、TNFSF10（TRAIL　Apo-2リガンド、TL2）、TNFSF11（TRANCE/RANKリガンドODF、OPGリガンド）、TNFSF12（TWEAK　Apo-3リガンド、DR3リガンド）、TNFSF13（APRIL　TALL2）、TNFSF13B（BAFF　BLYS、TALL1、THANK、TNFSF20）、TNFSF14（LIGHT　HVEMリガンド、LTg）、TNFSF15（TL1A/VEGI）、TNFSF18（GITRリガンドAITRリガンド、TL6）、TNFSF1A（TNF-aコネクチン（Conectin）、DIF、TNFSF2）、TNFSF1B（TNF-b　LTa、TNFSF1）、TNFSF3（LTb　TNFC、p33）、TNFSF4（OX40リガンドgp34、TXGP1）、TNFSF5（CD40リガンドCD154、gp39、HIGM1、IMD3、TRAP）、TNFSF6（FasリガンドApo-1リガンド、APT1リガンド）、TNFSF7（CD27リガンドCD70）、TNFSF8（CD30リガンドCD153）、TNFSF9（4-1BBリガンドCD137リガンド）、TP-1、t-PA、Tpo、TRAIL、TRAIL　R、TRAIL-R1、TRAIL-R2、TRANCE、トランスフェリン受容体、TRF、Trk、TROP-2、TSG、TSLP、腫瘍関連抗原CA125、腫瘍関連抗原発現ルイスY関連炭水化物、TWEAK、TXB2、Ung、uPAR、uPAR-1、ウロキナーゼ、VCAM、VCAM-1、VECAD、VE-Cadherin、VE-cadherin-2、VEFGR-1（flt-1）、VEGF、VEGFR、VEGFR-3（flt-4）、VEGI、VIM、ウイルス抗原、VLA、VLA-1、VLA-4、VNRインテグリン、フォン・ヴィレブランド因子、WIF-1、WNT1、WNT2、WNT2B／13、WNT3、WNT3A、WNT4、WNT5A、WNT5B、WNT6、WNT7A、WNT7B、WNT8A、WNT8B、WNT9A、WNT9A、WNT9B、WNT10A、WNT10B、WNT11、WNT16、XCL1、XCL2、XCR1、XCR1、XEDAR、XIAP、XPD、HMGB1、IgA、Aβ、CD81,　CD97,　CD98,　DDR1,　DKK1,　EREG、Hsp90,　IL-17/IL-17R、IL-20/IL-20R、酸化LDL,　PCSK9,　prekallikrein　,　RON,　TMEM16F、SOD1,　Chromogranin　A,　Chromogranin　B、tau,　VAP1、高分子キニノーゲン、IL-31、IL-31R、Nav1.1、Nav1.2、Nav1.3、Nav1.4、Nav1.5、Nav1.6、Nav1.7、Nav1.8、Nav1.9、EPCR、C1,　C1q,　C1r,　C1s,　C2,　C2a,　C2b,　C3,　C3a,　C3b,　C4,　C4a,　C4b,　C5,　C5a,　C5b,　C6,　C7,　C8,　C9,　factor　B,　factor　D,　factor　H,　properdin、sclerostin、fibrinogen,　fibrin,prothrombin,　thrombin,　組織因子,　factor　V,　factor　Va,　factor　VII,　factor　VIIa,　factor　VIII,　factor　VIIIa,　factor　IX,　factor　IXa,　factor　X,　factor　Xa,　factor　XI,　factor　XIa,　factor　XII,　factor　XIIa,　factor　XIII,　factor　XIIIa,　TFPI,　antithrombin　III,　EPCR,　トロンボモデュリン、TAPI,　tPA,　plasminog
en,　plasmin,　PAI-1,　PAI-2、GPC3、Syndecan-1、Syndecan-2、Syndecan-3、Syndecan-4、LPA、S1P、Acetylcholine　receptor、AdipoR1、AdipoR2、ADP　ribosyl　cyclase-1、alpha-4/beta-7　integrin、alpha-5/beta-1　integrin、alpha-v/beta-6　integrin、alphavbeta1　integrin、Angiopoietin　ligand-2、Angptl2、Anthrax、Cadherin、Carbonic　anhydrase-IX、CD105、CD155、CD158a、CD37、CD49b、CD51、CD70、CD72、Claudin　18、Clostridium　difficile　toxin、CS1、Delta-like　protein　ligand　4、DHICA　oxidase、Dickkopf-1　ligand、Dipeptidyl　peptidase　IV、EPOR、F　protein　of　RSV、Factor　Ia、FasL、Folate　receptor　alpha、Glucagon　receptor、Glucagon-like　peptide　1　receptor、Glutamate　carboxypeptidase　II、GMCSFR、Hepatitis　C　virus　E2　glycoprotein、Hepcidin、IL-17　receptor、IL-22　receptor、IL-23　receptor、IL-3　receptor、Kit　tyrosine　kinase、Leucine　Rich　Alpha-2-Glycoprotein　1　(LRG1)、Lysosphingolipid　receptor、Membrane　glycoprotein　OX2、Mesothelin、MET、MICA、MUC-16、Myelin　associated　glycoprotein、Neuropilin-1、Neuropilin-2、Nogo　receptor、PLXNA1、PLXNA2、PLXNA3、PLXNA4A、PLXNA4B　、PLXNB1、PLXNB2、PLXNB3　、PLXNC1　、PLXND1　、Programmed　cell　death　ligand　1、Proprotein　convertase　PC9、P-selectin　glycoprotein　ligand-1、RAGE、Reticulon　4、RF、RON-8、SEMA3A、SEMA3B、SEMA3C、SEMA3D、SEMA3E、SEMA3F、SEMA3G、SEMA4A、SEMA4B、SEMA4C、SEMA4D、SEMA4F、SEMA4G、SEMA5A、SEMA5B、SEMA6A、SEMA6B、SEMA6C、SEMA6D、SEMA7A、Shiga　like　toxin　II、Sphingosine-1-phosphate　receptor-1、ST2、Staphylococcal　lipoteichoic　acid、Tenascin、TG2、Thymic　stromal　lymphoprotein　receptor、TNF　superfamily　receptor　12A、Transmembrane　glycoprotein　NMB、TREM-1、TREM-2、Trophoblast　glycoprotein、TSH　receptor、TTR、Tubulin、ULBP2ならびにホルモンおよび成長因子のための受容体が例示され得る。
　抗原中に存在する抗原決定基を意味するエピトープは、本明細書において開示される抗原結合分子中の抗原結合ドメインが結合する抗原上の部位を意味する。よって、例えば、エピトープは、その構造によって定義され得る。また、当該エピトープを認識する抗原結合分子中の抗原に対する結合活性によっても当該エピトープが定義され得る。抗原がペプチド又はポリペプチドである場合には、エピトープを構成するアミノ酸残基によってエピトープを特定することも可能である。また、エピトープが糖鎖である場合には、特定の糖鎖構造によってエピトープを特定することも可能である。
　直線状エピトープは、アミノ酸一次配列が認識されたエピトープを含むエピトープである。直線状エピトープは、典型的には、少なくとも3つ、および最も普通には少なくとも5つ、例えば約8ないし約10個、6ないし20個のアミノ酸が固有の配列において含まれる。
立体構造エピトープは、直線状エピトープとは対照的に、エピトープを含むアミノ酸の一次配列が、認識されたエピトープの単一の規定成分ではないエピトープ（例えば、アミノ酸の一次配列が、必ずしもエピトープを規定する抗体により認識されないエピトープ）である。立体構造エピトープは、直線状エピトープに対して増大した数のアミノ酸を包含するかもしれない。立体構造エピトープの認識に関して、抗体は、ペプチドまたはタンパク質の三次元構造を認識する。例えば、タンパク質分子が折り畳まれて三次元構造を形成する場合には、立体構造エピトープを形成するあるアミノ酸および/またはポリペプチド主鎖は、並列となり、抗体がエピトープを認識するのを可能にする。エピトープの立体構造を決定する方法には、例えばX線結晶学、二次元核磁気共鳴分光学並びに部位特異的なスピン標識および電磁常磁性共鳴分光学が含まれるが、これらには限定されない。例えば、Epitope　Mapping　Protocols　in　Methods　in　Molecular　Biology　(1996)、第66巻、Morris（編）を参照。
結合活性
　下記にIL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子によるエピトープへの結合の確認方法が例示されるが、IL-6R以外の抗原に対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子によるエピトープへの結合の確認方法も下記の例示に準じて適宜実施され得る。
　例えば、IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子が、IL-6R分子中に存在する線状エピトープを認識することは、たとえば次のようにして確認することができる。上記の目的のためにIL-6Rの細胞外ドメインを構成するアミノ酸配列からなる線状のペプチドが合成される。当該ペプチドは、化学的に合成され得る。あるいは、IL-6RのcDNA中の、細胞外ドメインに相当するアミノ酸配列をコードする領域を利用して、遺伝子工学的手法により得られる。次に、細胞外ドメインを構成するアミノ酸配列からなる線状ペプチドと、IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子との結合活性が評価される。たとえば、固定化された線状ペプチドを抗原とするELISAによって、当該ペプチドに対する当該抗原結合分子の結合活性が評価され得る。あるいは、IL-6R発現細胞に対する当該抗原結合分子の結合における、線状ペプチドによる阻害のレベルに基づいて、線状ペプチドに対する結合活性が明らかにされ得る。これらの試験によって、線状ペプチドに対する当該抗原結合分子の結合活性が明らかにされ得る。
　また、IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子が立体構造エピトープを認識することは、次のようにして確認され得る。上記の目的のために、IL-6Rを発現する細胞が調製される。IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子がIL-6R発現細胞に接触した際に当該細胞に強く結合する一方で、当該抗原結合分子が固定化されたIL-6Rの細胞外ドメインを構成するアミノ酸配列からなる線状ペプチドに対して実質的に結合しないとき等が挙げられる。ここで、実質的に結合しないとは、ヒトIL-6R発現細胞に対する結合活性の80％以下、通常50％以下、好ましくは30％以下、特に好ましくは15％以下の結合活性をいう。
　IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子のIL-6R発現細胞に対する結合活性を測定する方法としては、例えば、Antibodies　A　Laboratory　Manual記載の方法（Ed　Harlow,　David　Lane,　Cold　Spring　Harbor　Laboratory　(1988)　359-420）が挙げられる。即ちIL-6R発現細胞を抗原とするELISAやFACS（fluorescence　activated　cell　sorting）の原理によって評価され得る。
　ELISAフォーマットにおいて、IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子のIL-6R発現細胞に対する結合活性は、酵素反応によって生成するシグナルレベルを比較することによって定量的に評価される。すなわち、IL-6R発現細胞を固定化したELISAプレートに被験抗原結合分子を加え、細胞に結合した被験抗原結合分子が、被験抗原結合分子を認識する酵素標識抗体を利用して検出される。あるいはFACSにおいては、被験抗原結合分子の希釈系列を作成し、IL-6R発現細胞に対する抗体結合力価（titer）を決定することにより、IL-6R発現細胞に対する被験抗原結合分子の結合活性が比較され得る。
　緩衝液等に懸濁した細胞表面上に発現している抗原に対する被験抗原結合分子の結合は、フローサイトメーターによって検出することができる。フローサイトメーターとしては、例えば、次のような装置が知られている。
FACSCantoTMII
FACSAriaTM
FACSArrayTM
FACSVantageTMSE
FACSCaliburTM（いずれもBD　Biosciences社の商品名）
EPICS　ALTRA　HyPerSort
Cytomics　FC　500
EPICS　XL-MCL　ADC　EPICS　XL　ADC
Cell　Lab　Quanta　/　Cell　Lab　Quanta　SC（いずれもBeckman　Coulter社の商品名）
　例えば、IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子の抗原に対する結合活性の好適な測定方法の一例として、次の方法が挙げられる。まず、IL-6Rを発現する細胞と反応させた被験抗原結合分子を認識するFITC標識した二次抗体で染色する。被験抗原結合分子を適宜好適な緩衝液によって希釈することによって、当該抗原結合分子が所望の濃度に調製して用いられる。例えば、10μg/mlから10　ng/mlまでの間のいずれかの濃度で使用され得る。次に、FACSCalibur（BD社）により蛍光強度と細胞数が測定される。当該細胞に対する抗体の結合量は、CELL　QUEST　Software（BD社）を用いて解析することにより得られた蛍光強度、すなわちGeometric　Meanの値に反映される。すなわち、当該Geometric　Meanの値を得ることにより、被験抗原結合分子の結合量によって表される被験抗原結合分子の結合活性が測定され得る。
　IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子が、ある抗原結合分子とエピトープを共有することは、両者の同じエピトープに対する競合によって確認され得る。抗原結合分子間の競合は、交叉ブロッキングアッセイなどによって検出される。例えば競合ELISAアッセイは、好ましい交叉ブロッキングアッセイである。
　具体的には、交叉ブロッキングアッセイにおいては、マイクロタイタープレートのウェル上にコートしたIL-6Rタンパク質が、候補となる競合抗原結合分子の存在下、または非存在下でプレインキュベートされた後に、被験抗原結合分子が添加される。ウェル中のIL-6Rタンパク質に結合した被験抗原結合分子の量は、同じエピトープへの結合に対して競合する候補となる競合抗原結合分子の結合能に間接的に相関している。すなわち同一エピトープに対する競合抗原結合分子の親和性が大きくなればなる程、被験抗原結合分子のIL-6Rタンパク質をコートしたウェルへの結合活性は低下する。
　IL-6Rタンパク質を介してウェルに結合した被験抗原結合分子の量は、予め抗原結合分子を標識しておくことによって、容易に測定され得る。たとえば、ビオチン標識された抗原結合分子は、アビジンペルオキシダーゼコンジュゲートと適切な基質を使用することにより測定される。ペルオキシダーゼなどの酵素標識を利用した交叉ブロッキングアッセイは、特に競合ELISAアッセイといわれる。抗原結合分子は、検出あるいは測定が可能な他の標識物質で標識され得る。具体的には、放射標識あるいは蛍光標識などが公知である。
　候補の競合抗原結合分子の非存在下で実施されるコントロール試験において得られる結合活性と比較して、競合抗原結合分子が、IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子の結合を少なくとも20％、好ましくは少なくとも20－50％、さらに好ましくは少なくとも50％ブロックできるならば、当該被験抗原結合分子は競合抗原結合分子と実質的に同じエピトープに結合するか、又は同じエピトープへの結合に対して競合する抗原結合分子である。
　IL-6Rに対する抗原結合ドメインを含む被験抗原結合分子が結合するエピトープの構造が同定されている場合には、被験抗原結合分子と対照抗原結合分子とがエピトープを共有することは、当該エピトープを構成するペプチドにアミノ酸変異を導入したペプチドに対する両者の抗原結合分子の結合活性を比較することによって評価され得る。
　こうした結合活性を測定する方法としては、例えば、前記のELISAフォーマットにおいて変異を導入した線状のペプチドに対する被験抗原結合分子及び対照抗原結合分子の結合活性を比較することによって測定され得る。ELISA以外の方法としては、カラムに結合した当該変異ペプチドに対する結合活性を、当該カラムに被検抗原結合分子と対照抗原結合分子を流下させた後に溶出液中に溶出される抗原結合分子を定量することによっても測定され得る。変異ペプチドを例えばGSTとの融合ペプチドとしてカラムに吸着させる方法は公知である。
　また、同定されたエピトープが立体エピトープの場合には、被験抗原結合分子と対照抗原結合分子とがエピトープを共有することは、次の方法で評価され得る。まず、IL-6Rを発現する細胞とエピトープに変異が導入されたIL-6Rを発現する細胞が調製される。これらの細胞がPBS等の適切な緩衝液に懸濁された細胞懸濁液に対して被験抗原結合分子と対照抗原結合分子が添加される。次いで、適宜緩衝液で洗浄された細胞懸濁液に対して、被験抗原結合分子と対照抗原結合分子を認識することができるFITC標識された抗体が添加される。標識抗体によって染色された細胞の蛍光強度と細胞数がFACSCalibur（BD社）によって測定される。被験抗原結合分子と対照抗原結合分子の濃度は好適な緩衝液によって適宜希釈することによって所望の濃度に調製して用いられる。例えば、10μg/mlから10　ng/mlまでの間のいずれかの濃度で使用される。当該細胞に対する標識抗体の結合量は、CELLQUEST　Software（BD社）を用いて解析することにより得られた蛍光強度、すなわちGeometric　Meanの値に反映される。すなわち、当該Geometric　Meanの値を得ることにより、標識抗体の結合量によって表される被験抗原結合分子と対照抗原結合分子の結合活性を測定することができる。
　本方法において、例えば「変異IL-6R発現細胞に実質的に結合しない」ことは、以下の方法によって判断することができる。まず、変異IL-6Rを発現する細胞に対して結合した被験抗原結合分子と対照抗原結合分子が、標識抗体で染色される。次いで細胞の蛍光強度が検出される。蛍光検出にフローサイトメトリーとしてFACSCaliburを用いた場合、得られた蛍光強度はCELL　QUEST　Softwareを用いて解析され得る。抗原結合分子の存在下および非存在下でのGeometric　Meanの値から、この比較値（ΔGeo-Mean）を下記の計算式に基づいて算出することにより、抗原結合分子の結合による蛍光強度の増加割合を求めることができる。
　ΔGeo-Mean＝Geo-Mean（抗原結合分子の存在下）／Geo-Mean（抗原結合分子の非存在下）
　解析によって得られる被験抗原結合分子の変異IL-6R発現細胞に対する結合量が反映されたGeometric　Mean比較値（変異IL-6R分子ΔGeo-Mean値）を、被験抗原結合分子のIL-6R発現細胞に対する結合量が反映されたΔGeo-Mean比較値と比較する。この場合において、変異IL-6R発現細胞及びIL-6R発現細胞に対するΔGeo-Mean比較値を求める際に使用する被験抗原結合分子の濃度は互いに同一又は実質的に同一の濃度で調製されることが特に好ましい。予めIL-6R中のエピトープを認識していることが確認された抗原結合分子が、対照抗原結合分子として利用される。
　被験抗原結合分子の変異IL-6R発現細胞に対するΔGeo-Mean比較値が、被験抗原結合分子のIL-6R発現細胞に対するΔGeo-Mean比較値の、少なくとも80％、好ましくは50％、更に好ましくは30％、特に好ましくは15％より小さければ、「変異IL-6R発現細胞に実質的に結合しない」ものとする。Geo-Mean値（Geometric　Mean）を求める計算式は、CELL　QUEST　Software　User’s　Guide（BD　biosciences社）に記載されている。比較値を比較することによってそれが実質的に同視し得る程度であれば、被験抗原結合分子と対照抗原結合分子のエピトープは同一であると評価され得る。
抗原結合ドメイン
　本明細書において、「抗原結合ドメイン」は目的とする抗原に結合するかぎりどのような構造のドメインも使用され得る。そのようなドメインの例として、例えば、抗体の重鎖および軽鎖の可変領域、生体内に存在する細胞膜タンパクであるAvimerに含まれる35アミノ酸程度のAドメインと呼ばれるモジュール（WO2004/044011、WO2005/040229）、細胞膜に発現する糖たんぱく質であるfibronectin中のタンパク質に結合するドメインである10Fn3ドメインを含むAdnectin（WO2002/032925）、ProteinAの58アミノ酸からなる3つのヘリックスの束（bundle）を構成するIgG結合ドメインをscaffoldとするAffibody（WO1995/001937）、33アミノ酸残基を含むターンと2つの逆並行ヘリックスおよびループのサブユニットが繰り返し積み重なった構造を有するアンキリン反復（ankyrin　repeat：AR）の分子表面に露出する領域であるDARPins（Designed　Ankyrin　Repeat　proteins）（WO2002/020565）、好中球ゲラチナーゼ結合リポカリン（neutrophil　gelatinase-associated　lipocalin（NGAL））等のリポカリン分子において高度に保存された8つの逆並行ストランドが中央方向にねじれたバレル構造の片側を支える4つのループ領域であるAnticalin等（WO2003/029462）、ヤツメウナギ、ヌタウナギなど無顎類の獲得免疫システムとしてイムノグロブリンの構造を有さない可変性リンパ球受容体（variable　lymphocyte　receptor（VLR））のロイシン残基に富んだリピート（leucine-rich-repeat（LRR））モジュールが繰り返し積み重なった馬てい形の構造の内部の並行型シート構造のくぼんだ領域（WO2008/016854）が好適に挙げられる。本発明の抗原結合ドメインの好適な例として、抗体の重鎖および軽鎖の可変領域を含む抗原結合ドメインが挙げられる。こうした抗原結合ドメインの例としては、「scFv（single　chain　Fv）」、「単鎖抗体（single　chain　antibody）」、「Fv」、「scFv2（single　chain　Fv　2）」、「diabody」、「Fab」、「F(ab')2」、domain　antibody（dAb）（WO2004/058821、WO2003/002609）、scFv-sc（WO2005/037989）またはFc融合タンパク質等が好適に挙げられる。Fc領域を含んでいる分子は、Fc領域をFcRn特にヒトFcRnに対する結合ドメインとして使用され得る。また、これらの分子にヒトFcRn結合ドメインが融合された分子も使用され得る。
　本発明の抗原結合分子における抗原結合ドメインは、同一のエピトープに結合することができる。ここで同一のエピトープは、例えば、配列番号：１（IL-6R＿PP；NP＿000556.1）に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質中に存在することができる。また、配列番号：１に記載のアミノ酸配列の20番目から365番目のアミノ酸からなるタンパク質中に存在することができる。あるいは、本発明の抗原結合分子における抗原結合ドメインは、互いに異なるエピトープに結合することができる。ここで異なるエピトープは、例えば、配列番号：１に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質中に存在することができる。また、配列番号：１に記載のアミノ酸配列の20番目から365番目のアミノ酸からなるタンパク質中に存在することができる。このような目的のために二重特異性抗体に含まれる抗原結合ドメインが適宜利用され得る。二重特異性抗体は、異なるエピトープを認識する可変領域を同一の抗体分子内に有する抗体をいう。二種特異性抗体は２つ以上の異なる抗原を認識する抗体であり得るし、同一抗原上の異なる２つ以上のエピトープを認識する抗体でもあり得る。
　また、本発明の抗原結合ドメインとしては、標的（抗原）に結合するレセプター（受容体）タンパク質におけるその標的（抗原）に対する結合に関与するドメインが好適に使用され得る。すなわち、抗原結合分子は、標的（抗原）に結合するレセプタータンパク質にFcRn特にFcRnに対する結合ドメインおよび糖鎖受容体結合ドメインが融合されたタンパク質であっても良い。こうした抗原結合分子の例としては、例えば、TNFR-Fc融合タンパク、IL1R-Fc融合タンパク、VEGFR-Fc融合タンパク、CTLA4-Fc融合タンパク等（Nat　Med.　(2003)　9　(1),　47-52、BioDrugs.　(2006)　20　(3),　151-160）が挙げられる。本発明の抗原結合分子がこれらレセプタータンパク質とFcRn特にヒトFcRnに対する結合ドメインとの融合タンパク質であっても、イオン濃度の条件によって標的分子に対する結合活性が変化し、糖鎖受容体に対する結合活性、およびFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を有する抗原結合分子は、抗原の細胞内への取込を促進させ、抗原結合分子の投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させることが可能である。また、そのような抗原結合分子の薬物動態は向上されており、１つの抗原結合分子が結合可能な抗原の数を増加させることが可能である。
　また、本発明の抗原結合ドメインとしては、標的に結合する天然または人工のリガンドにおけるその標的に対する結合に関与するドメインが好適に使用され得る。すなわち、抗原結合分子は、標的に結合しアンタゴニスト活性や中和効果を有する天然または人工のタンパク質リガンドにFcRn特にFcRnに対する結合ドメインおよび糖鎖受容体結合ドメインが融合した分子でもあり得る。こうした抗原結合ドメインのうち人工リガンドの例として、例えば、変異IL-6（EMBO　J.　(1994)　13　(24),　5863-70）等の人工リガンドが挙げられる。本発明の抗原結合分子がこれら人工リガンド融合分子であっても、イオン濃度の条件によって標的分子に対する結合が変化し、糖鎖受容体に対する結合活性、およびFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を有する抗原結合分子は、抗原の細胞内への取込を促進させ、抗原結合分子の投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させることが可能である。また、そのような抗原結合分子の薬物動態は向上されており、１つの抗原結合分子が結合可能な抗原の数を増加させることが可能である。
特異的
　特異的とは、特異的に結合する分子の一方の分子がその一または複数の結合する相手方の分子以外の分子に対しては何ら有意な結合を示さない状態をいう。また、抗原結合ドメインが、ある抗原中に含まれる複数のエピトープのうち特定のエピトープに対して特異的である場合にも用いられる。また、抗原結合ドメインが結合するエピトープが複数の異なる抗原に含まれる場合には、当該抗原結合ドメインを有する抗原結合分子は当該エピトープを含む様々な抗原と結合することができる。
抗体
　本明細書において、抗体とは、天然のものであるかまたは部分的もしくは完全合成により製造された免疫グロブリンをいう。抗体はそれが天然に存在する血漿や血清等の天然資源や抗体を産生するハイブリドーマ細胞の培養上清から単離され得るし、または遺伝子組換え等の手法を用いることによって部分的にもしくは完全に合成され得る。抗体の例としては免疫グロブリンのアイソタイプおよびそれらのアイソタイプのサブクラスが好適に挙げられる。ヒトの免疫グロブリンとして、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1、IgA2、IgD、IgE、IgMの9種類のクラス（アイソタイプ）が知られている。本発明の抗体には、これらのアイソタイプのうちIgG1、IgG2、IgG3、IgG4が含まれ得る。
　所望の結合活性を有する抗体を作製する方法は当業者において公知である。以下に、IL-6Rに結合する抗体（抗IL-6R抗体）を作製する方法が例示される。IL-6R以外の抗原に結合する抗体も下記の例示に準じて適宜作製され得る。
　抗IL-6R抗体は、公知の手段を用いてポリクローナルまたはモノクローナル抗体として取得され得る。抗IL-6R抗体としては、哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好適に作製され得る。哺乳動物由来のモノクローナル抗体には、ハイブリドーマにより産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主細胞によって産生されるもの等が含まれる。なお本願発明のモノクローナル抗体には、「ヒト化抗体」や「キメラ抗体」が含まれる。
　モノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、公知技術を使用することによって、例えば以下のように作製され得る。すなわち、IL-6Rタンパク質を感作抗原として使用して、通常の免疫方法にしたがって哺乳動物が免疫される。得られる免疫細胞が通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合される。次に、通常のスクリーニング法によって、モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって抗IL-6R抗体を産生するハイブリドーマが選択され得る。
　具体的には、モノクローナル抗体の作製は例えば以下に示すように行われる。まず、配列番号：２（IL-6R＿PN；NM＿000565.3）にそのヌクレオチド配列が開示されたIL-6R遺伝子を発現することによって、抗体取得の感作抗原として使用される配列番号：１で表されるIL-6Rタンパク質が取得され得る。すなわち、IL-6Rをコードする遺伝子配列を公知の発現ベクターに挿入することによって適当な宿主細胞が形質転換される。当該宿主細胞中または培養上清中から所望のヒトIL-6Rタンパク質が公知の方法で精製される。培養上清中から可溶型のIL-6Rを取得するためには、例えば、Mullbergら（J.　Immunol.　(1994)　152　(10),　4958-4968）によって記載されているような可溶型IL-6Rである、配列番号：１で表されるIL-6Rポリペプチド配列のうち、1から357番目のアミノ酸からなるタンパク質が、配列番号：１で表されるIL-6Rタンパク質の代わりに発現される。また、精製した天然のIL-6Rタンパク質もまた同様に感作抗原として使用され得る。
　哺乳動物に対する免疫に使用する感作抗原として当該精製IL-6Rタンパク質が使用できる。IL-6Rの部分ペプチドもまた感作抗原として使用できる。この際、当該部分ペプチドはヒトIL-6Rのアミノ酸配列より化学合成によっても取得され得る。また、IL-6R遺伝子の一部を発現ベクターに組み込んで発現させるによっても取得され得るが、部分ペプチドとして用いるIL-6Rペプチドの領域および大きさは特に特別の態様に限定されない。好ましい領域は配列番号：１のアミノ酸配列において20-357番目のアミノ酸に相当するアミノ酸配列から任意の配列が選択され得る。感作抗原とするペプチドを構成するアミノ酸の数は少なくとも5以上、例えば6以上、或いは7以上であることが好ましい。より具体的には8～50、好ましくは10～30残基のペプチドが感作抗原として使用され得る。
　また、IL-6Rタンパク質の所望の部分ポリペプチドやペプチドを異なるポリペプチドと融合した融合タンパク質が感作抗原として利用され得る。感作抗原として使用される融合タンパク質を製造するために、例えば、抗体のFc断片やペプチドタグなどが好適に利用され得る。融合タンパク質を発現するベクターは、所望の二種類又はそれ以上のポリペプチド断片をコードする遺伝子がインフレームで融合され、当該融合遺伝子が前記のように発現ベクターに挿入されることにより作製され得る。融合タンパク質の作製方法はMolecular　Cloning　2nd　ed.　（Sambrook,J　et　al.,　Molecular　Cloning　2nd　ed.,　9.47-9.58（1989）Cold　Spring　Harbor　Lab.　press）に記載されている。感作抗原として用いられるIL-6Rの取得方法及びそれを用いた免疫方法は、WO2003/000883、WO2004/022754、WO2006/006693等にも具体的に記載されている。
　当該感作抗原で免疫される哺乳動物としては、特定の動物に限定されるものではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するのが好ましい。一般的にはげっ歯類の動物、例えば、マウス、ラット、ハムスター、あるいはウサギ、サル等が好適に使用される。
　公知の方法にしたがって上記の動物が感作抗原により免疫される。例えば、一般的な方法として、感作抗原が哺乳動物の腹腔内または皮下に注射によって投与されることにより免疫が実施される。具体的には、PBS（Phosphate-Buffered　Saline）や生理食塩水等で適当な希釈倍率で希釈された感作抗原が、所望により通常のアジュバント、例えばフロイント完全アジュバントと混合され、乳化された後に、該感作抗原が哺乳動物に4から21日毎に数回投与される。また、感作抗原の免疫時には適当な担体が使用され得る。特に分子量の小さい部分ペプチドが感作抗原として用いられる場合には、アルブミン、キーホールリンペットヘモシアニン等の担体タンパク質と結合した該感作抗原ペプチドを免疫することが望ましい場合もある。
　また、所望の抗体を産生するハイブリドーマは、DNA免疫を使用し、以下のようにしても作製され得る。DNA免疫とは、免疫動物中で抗原タンパク質をコードする遺伝子が発現され得るような態様で構築されたベクターDNAが投与された当該免疫動物中で、感作抗原が当該免疫動物の生体内で発現されることによって、免疫刺激が与えられる免疫方法である。蛋白質抗原が免疫動物に投与される一般的な免疫方法と比べて、DNA免疫には、次のような優位性が期待される。
　－IL-6Rのような膜蛋白質の構造を維持して免疫刺激が与えられ得る
　－免疫抗原を精製する必要が無い
　DNA免疫によって本発明のモノクローナル抗体を得るために、まず、IL-6Rタンパク質を発現するDNAが免疫動物に投与される。IL-6RをコードするDNAは、PCRなどの公知の方法によって合成され得る。得られたDNAが適当な発現ベクターに挿入され、免疫動物に投与される。発現ベクターとしては、たとえばpcDNA3.1などの市販の発現ベクターが好適に利用され得る。ベクターを生体に投与する方法として、一般的に用いられている方法が利用され得る。たとえば、発現ベクターが吸着した金粒子が、gene　gunで免疫動物個体の細胞内に導入されることによってDNA免疫が行われる。さらに、IL-6Rを認識する抗体の作製は国際公開WO2003/104453に記載された方法を用いても作製され得る。
　このように哺乳動物が免疫され、血清中におけるIL-6Rに結合する抗体力価の上昇が確認された後に、哺乳動物から免疫細胞が採取され、細胞融合に供される。好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が使用され得る。
　前記免疫細胞と融合される細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞が用いられる。ミエローマ細胞は、スクリーニングのための適当な選択マーカーを備えていることが好ましい。選択マーカーとは、特定の培養条件の下で生存できる（あるいはできない）形質を指す。選択マーカーには、ヒポキサンチン－グアニン－ホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損（以下HGPRT欠損と省略する）、あるいはチミジンキナーゼ欠損（以下TK欠損と省略する）などが公知である。HGPRTやTKの欠損を有する細胞は、ヒポキサンチン－アミノプテリン－チミジン感受性（以下HAT感受性と省略する）を有する。HAT感受性の細胞はHAT選択培地中でDNA合成を行うことができず死滅するが、正常な細胞と融合すると正常細胞のサルベージ回路を利用してDNAの合成を継続することができるためHAT選択培地中でも増殖するようになる。
　HGPRT欠損やTK欠損の細胞は、それぞれ6チオグアニン、8アザグアニン（以下8AGと省略する）、あるいは5'ブロモデオキシウリジンを含む培地で選択され得る。これらのピリミジンアナログをDNA中に取り込む正常な細胞は死滅する。他方、これらのピリミジンアナログを取り込めないこれらの酵素を欠損した細胞は、選択培地の中で生存することができる。この他G418耐性と呼ばれる選択マーカーは、ネオマイシン耐性遺伝子によって2-デオキシストレプタミン系抗生物質（ゲンタマイシン類似体）に対する耐性を与える。細胞融合に好適な種々のミエローマ細胞が公知である。
　このようなミエローマ細胞として、例えば、P3（P3x63Ag8.653）（J.　Immunol.（1979）123　(4),　1548-1550）、P3x63Ag8U.1（Current　Topics　in　Microbiology　and　Immunology（1978）81,　1-7）、NS-1（C.　Eur.　J.　Immunol.（1976）6　(7),　511-519）、MPC-11（Cell（1976）8　(3),　405-415）、SP2/0（Nature（1978）276　(5685),　269-270）、FO（J.　Immunol.　Methods（1980）35　(1-2),　1-21）、S194/5.XX0.BU.1（J.　Exp.　Med.（1978）148　(1),　313-323）、R210（Nature（1979）277　(5692),　131-133）等が好適に使用され得る。
　基本的には公知の方法、たとえば、ケーラーとミルステインらの方法（Methods　Enzymol.（1981）73,　3-46）等に準じて、前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合が行われる。より具体的には、例えば細胞融合促進剤の存在下で通常の栄養培養液中で、前記細胞融合が実施され得る。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（PEG）、センダイウイルス（HVJ）等が使用され、更に融合効率を高めるために所望によりジメチルスルホキシド等の補助剤が添加されて使用される。
　免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定され得る。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を1から10倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なRPMI1640培養液、MEM培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用され、さらに、牛胎児血清（FCS）等の血清補液が好適に添加され得る。
　細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め37℃程度に加温されたPEG溶液（例えば平均分子量1000から6000程度）が通常30から60％（w/v）の濃度で添加される。混合液が緩やかに混合されることによって所望の融合細胞（ハイブリドーマ）が形成される。次いで、上記に挙げた適当な培養液が逐次添加され、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等が除去され得る。
このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばHAT培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択され得る。所望のハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、係る十分な時間は数日から数週間である）上記HAT培養液を用いた培養が継続され得る。次いで、通常の限界希釈法によって、所望の抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよび単一クローニングが実施される。
　このようにして得られたハイブリドーマは、細胞融合に用いられたミエローマが有する選択マーカーに応じた選択培養液を利用することによって選択され得る。例えばHGPRTやTKの欠損を有する細胞は、HAT培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択され得る。すなわち、HAT感受性のミエローマ細胞を細胞融合に用いた場合、HAT培養液中で、正常細胞との細胞融合に成功した細胞が選択的に増殖し得る。所望のハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間、上記HAT培養液を用いた培養が継続される。具体的には、一般に、数日から数週間の培養によって、所望のハイブリドーマが選択され得る。次いで、通常の限界希釈法によって、所望の抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよび単一クローニングが実施され得る。
　所望の抗体のスクリーニングおよび単一クローニングが、公知の抗原抗体反応に基づくスクリーニング方法によって好適に実施され得る。例えば、IL-6Rに結合するモノクローナル抗体は、細胞表面に発現したIL-6Rに結合することができる。このようなモノクローナル抗体は、たとえば、FACS（fluorescence　activated　cell　sorting）によってスクリーニングされ得る。FACSは、蛍光抗体と接触させた細胞をレーザー光で解析し、個々の細胞が発する蛍光を測定することによって細胞表面への抗体の結合を測定することを可能にするシステムである。
　FACSによって本発明のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングするためには、まずIL-6Rを発現する細胞を調製する。スクリーニングのための好ましい細胞は、IL-6Rを強制発現させた哺乳動物細胞である。宿主細胞として使用した形質転換されていない哺乳動物細胞を対照として用いることによって、細胞表面のIL-6Rに対する抗体の結合活性が選択的に検出され得る。すなわち、宿主細胞に結合せず、IL-6R強制発現細胞に結合する抗体を産生するハイブリドーマを選択することによって、IL-6Rモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマが取得され得る。
　あるいは固定化したIL-6R発現細胞に対する抗体の結合活性がELISAの原理に基づいて評価され得る。たとえば、ELISAプレートのウェルにIL-6R発現細胞が固定化される。ハイブリドーマの培養上清をウェル内の固定化細胞に接触させ、固定化細胞に結合する抗体が検出される。モノクローナル抗体がマウス由来の場合、細胞に結合した抗体は、抗マウスイムノグロブリン抗体によって検出され得る。これらのスクリーニングによって選択された、抗原に対する結合能を有する所望の抗体を産生するハイブリドーマは、限界希釈法等によりクローニングされ得る。
　このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは通常の培養液中で継代培養され得る。また、該ハイブリドーマは液体窒素中で長期にわたって保存され得る。
　当該ハイブリドーマを通常の方法に従い培養し、その培養上清から所望のモノクローナル抗体が取得され得る。あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖せしめ、その腹水からモノクローナル抗体が取得され得る。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに好適なものである。
組換え抗体（Recombinant　Antibody）
　当該ハイブリドーマ等の抗体産生細胞からクローニングされる抗体遺伝子によってコードされる抗体も好適に利用され得る。クローニングした抗体遺伝子を適当なベクターに組み込んで宿主に導入することによって、当該遺伝子によってコードされる抗体が発現する。抗体遺伝子の単離と、ベクターへの導入、そして宿主細胞の形質転換のための方法は例えば、Vandammeらによって既に確立されている（Eur.J.　Biochem.（1990）192　(3),　767-775）。下記に述べるように組換え抗体の製造方法もまた公知である。
　たとえば、抗IL-6R抗体を産生するハイブリドーマ細胞から、抗IL-6R抗体の可変領域（V領域）をコードするcDNAが取得される。そのために、通常、まずハイブリドーマから全RNAが抽出される。細胞からmRNAを抽出するための方法として、たとえば次のような方法を利用することができる。
　－グアニジン超遠心法（Biochemistry　(1979)　18　(24),　5294-5299）
　－AGPC法（Anal.　Biochem.　(1987)　162　(1),　156-159）
　抽出されたmRNAは、mRNA　Purification　Kit　（GEヘルスケアバイオサイエンス製）等を使用して精製され得る。あるいは、QuickPrep　mRNA　Purificati　on　Kit　（GEヘルスケアバイオサイエンス製）などのように、細胞から直接全mRNAを抽出するためのキットも市販されている。このようなキットを用いて、ハイブリドーマからmRNAが取得され得る。得られたmRNAから逆転写酵素を用いて抗体V領域をコードするcDNAが合成され得る。cDNAは、AMV　Reverse　Transcriptase　First-strand　cDNA　Synthesis　Kit（生化学工業社製）等によって合成され得る。また、cDNAの合成および増幅のために、SMART　RACE　cDNA増幅キット（Clontech製）およびPCRを用いた5’-RACE法（Proc.　Natl.　Acad.　Sci.　USA　(1988)　85　(23),　8998-9002、Nucleic　Acids　Res.　(1989)　17　(8),　2919-2932）が適宜利用され得る。更にこうしたcDNAの合成の過程においてcDNAの両末端に後述する適切な制限酵素サイトが導入され得る。
　得られたPCR産物から目的とするcDNA断片が精製され、次いでベクターDNAと連結される。このように組換えベクターが作製され、大腸菌等に導入されコロニーが選択された後に、該コロニーを形成した大腸菌から所望の組換えベクターが調製され得る。そして、該組換えベクターが目的とするcDNAの塩基配列を有しているか否かについて、公知の方法、例えば、ジデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法等により確認される。
　可変領域をコードする遺伝子を取得するためには、可変領域遺伝子増幅用のプライマーを使った5’-RACE法を利用するのが簡便である。まずハイブリドーマ細胞より抽出されたRNAを鋳型としてcDNAが合成され、5’-RACE　cDNAライブラリが得られる。5’-RACE　cDNAライブラリの合成にはSMART　RACE　cDNA　増幅キットなど市販のキットが適宜用いられる。
　得られた5’-RACE　cDNAライブラリを鋳型として、PCR法によって抗体遺伝子が増幅される。公知の抗体遺伝子配列をもとにマウス抗体遺伝子増幅用のプライマーがデザインされ得る。これらのプライマーは、イムノグロブリンのサブクラスごとに異なる塩基配列である。したがって、サブクラスは予めIso　Stripマウスモノクローナル抗体アイソタイピングキット（ロシュ・ダイアグノスティックス）などの市販キットを用いて決定しておくことが望ましい。
　具体的には、たとえばマウスIgGをコードする遺伝子の取得を目的とするときには、重鎖としてγ１、γ2a、γ2b、γ3、軽鎖としてκ鎖とλ鎖をコードする遺伝子の増幅が可能なプライマーが利用され得る。IgGの可変領域遺伝子を増幅するためには、一般に3'側のプライマーには可変領域に近い定常領域に相当する部分にアニールするプライマーが利用される。一方5'側のプライマーには、5’　RACE　cDNAライブラリ作製キットに付属するプライマーが利用される。
　こうして増幅されたPCR産物を利用して、重鎖と軽鎖の組み合せからなるイムノグロブリンが再構成され得る。再構成されたイムノグロブリンの、IL-6Rに対する結合活性を指標として、所望の抗体がスクリーニングされ得る。たとえばIL-6Rに対する抗体の取得を目的とするとき、抗体のIL-6Rへの結合は、特異的であることがさらに好ましい。IL-6Rに結合する抗体は、たとえば次のようにしてスクリーニングされ得る；
（１）ハイブリドーマから得られたcDNAによってコードされるV領域を含む抗体をIL-6R発現細胞に接触させる工程、
（２）IL-6R発現細胞と抗体との結合を検出する工程、および
（３）IL-6R発現細胞に結合する抗体を選択する工程。
　抗体とIL-6R発現細胞との結合を検出する方法は公知である。具体的には、先に述べたFACSなどの手法によって、抗体とIL-6R発現細胞との結合が検出され得る。抗体の結合活性を評価するためにIL-6R発現細胞の固定標本が適宜利用され得る。
　結合活性を指標とする抗体のスクリーニング方法として、ファージベクターを利用したパニング法も好適に用いられる。ポリクローナルな抗体発現細胞群より抗体遺伝子を重鎖と軽鎖のサブクラスのライブラリとして取得した場合には、ファージベクターを利用したスクリーニング方法が有利である。
　重鎖と軽鎖の可変領域をコードする遺伝子は、適当なリンカー配列で連結することによってシングルチェインFv（scFv）を形成することができる（Nat.　Biotechnol.　(2005)　23(9),　1126-1136）。scFvをコードする遺伝子をファージベクターに挿入することにより、scFvを表面に発現するファージが取得され得る。このファージと所望の抗原との接触の後に、抗原に結合したファージを回収することによって、目的の結合活性を有するscFvをコードするDNAが回収され得る。この操作を必要に応じて繰り返すことにより、所望の結合活性を有するscFvが濃縮され得る。
　目的とする抗IL-6R抗体のV領域をコードするcDNAが得られた後に、当該cDNAの両末端に挿入した制限酵素サイトを認識する制限酵素によって該cDNAが消化される。好ましい制限酵素は、抗体遺伝子を構成する塩基配列に出現する頻度が低い塩基配列を認識して消化する。更に１コピーの消化断片をベクターに正しい方向で挿入するためには、付着末端を与える制限酵素の挿入が好ましい。上記のように消化された抗IL-6R抗体のV領域をコードするcDNAを適当な発現ベクターに挿入することによって、抗体発現ベクターが取得され得る。このとき、抗体定常領域（C領域）をコードする遺伝子と、前記V領域をコードする遺伝子とがインフレームで融合されれば、キメラ抗体が取得される。ここで、キメラ抗体とは、定常領域と可変領域の由来が異なることをいう。したがって、マウス－ヒトなどの異種キメラ抗体に加え、ヒト－ヒト同種キメラ抗体も、本発明におけるキメラ抗体に含まれる。予め定常領域を有する発現ベクターに、前記V領域遺伝子を挿入することによって、キメラ抗体発現ベクターが構築され得る。具体的には、たとえば、所望の抗体定常領域（C領域）をコードするDNAを保持した発現ベクターの5’側に、前記V領域遺伝子を消化する制限酵素の制限酵素認識配列が適宜配置され得る。同じ組合せの制限酵素で消化された両者がインフレームで融合されることによって、キメラ抗体発現ベクターが構築される。
　抗IL-6Rモノクローナル抗体を製造するために、抗体遺伝子が発現制御領域による制御の下で発現するように発現ベクターに組み込まれる。抗体を発現するための発現制御領域とは、例えば、エンハンサーやプロモーターを含む。また、発現した抗体が細胞外に分泌されるように、適切なシグナル配列がアミノ末端に付加され得る。後に記載される実施例ではシグナル配列として、アミノ酸配列MGWSCIILFLVATATGVHS（配列番号：３）を有するペプチドが使用されているが、これ以外にも適したシグナル配列が付加される。発現されたポリペプチドは上記配列のカルボキシル末端部分で切断され、切断されたポリペプチドが成熟ポリペプチドとして細胞外に分泌され得る。次いで、この発現ベクターによって適当な宿主細胞が形質転換されることによって、抗IL-6R抗体をコードするDNAを発現する組換え細胞が取得され得る。
　抗体遺伝子の発現のために、抗体重鎖（H鎖）および軽鎖（L鎖）をコードするDNAは、それぞれ別の発現ベクターに組み込まれる。H鎖とL鎖が組み込まれたベクターによって、同じ宿主細胞に同時に形質転換（co-transfect）されることによって、H鎖とL鎖を備えた抗体分子が発現され得る。あるいはH鎖およびL鎖をコードするDNAが単一の発現ベクターに組み込まれることによって宿主細胞が形質転換され得る（国際公開WO　1994/011523を参照のこと）。
　単離された抗体遺伝子を適当な宿主に導入することによって抗体を作製するための宿主細胞と発現ベクターの多くの組み合わせが公知である。これらの発現系は、いずれも本発明の抗原結合ドメインを単離するのに応用され得る。真核細胞が宿主細胞として使用される場合、動物細胞、植物細胞、あるいは真菌細胞が適宜使用され得る。具体的には、動物細胞としては、次のような細胞が例示され得る。
（１）哺乳類細胞、：CHO、COS、ミエローマ、BHK　（baby　hamster　kidney）、Hela、Vero、HEK（human　embryonic　kidney）293など
（２）両生類細胞：アフリカツメガエル卵母細胞など
（３）昆虫細胞：sf9、sf21、Tn5など
　あるいは植物細胞としては、ニコティアナ・タバカム（Nicotiana　tabacum）などのニコティアナ（Nicotiana）属由来の細胞による抗体遺伝子の発現系が公知である。植物細胞の形質転換には、カルス培養した細胞が適宜利用され得る。
　更に真菌細胞としては、次のような細胞を利用することができる。
　－酵母：サッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces　serevisiae）などのサッカロミセス（Saccharomyces　）属、メタノール資化酵母（Pichia　pastor　is）などのPichia属
　－糸状菌：アスペスギルス・ニガー（Aspergillus　niger）などのアスペルギルス（Aspergillus　）属
　また、原核細胞を利用した抗体遺伝子の発現系も公知である。たとえば、細菌細胞を用いる場合、大腸菌（E.　coli　）、枯草菌などの細菌細胞が適宜利用され得る。これらの細胞中に、目的とする抗体遺伝子を含む発現ベクターが形質転換によって導入される。形質転換された細胞をin　vitroで培養することにより、当該形質転換細胞の培養物から所望の抗体が取得され得る。
　組換え抗体の産生には、上記宿主細胞に加えて、トランスジェニック動物も利用され得る。すなわち所望の抗体をコードする遺伝子が導入された動物から、当該抗体を得ることができる。例えば、抗体遺伝子は、乳汁中に固有に産生されるタンパク質をコードする遺伝子の内部にインフレームで挿入することによって融合遺伝子として構築され得る。乳汁中に分泌されるタンパク質として、たとえば、ヤギβカゼインなどを利用され得る。抗体遺伝子が挿入された融合遺伝子を含むDNA断片はヤギの胚へ注入され、当該注入された胚が雌のヤギへ導入される。胚を受容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギ（またはその子孫）が産生する乳汁からは、所望の抗体が乳汁タンパク質との融合タンパク質として取得され得る。また、トランスジェニックヤギから産生される所望の抗体を含む乳汁量を増加させるために、ホルモンがトランスジェニックヤギに対して投与され得る（Bio/Technology　(1994),12　(7),　699-702）。
ヒト化抗体、ヒト抗体
　本明細書において記載される抗原結合分子がヒトに投与される場合、当該抗原結合分子における抗原結合ドメインとして、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体由来の抗原結合ドメインが適宜採用され得る。遺伝子組換え抗体には、前記されたキメラ抗体のほかに、例えば、ヒト化（Humanized）抗体等が含まれる。これらの改変抗体は、公知の方法を用いて適宜製造される。
　本明細書において記載される、抗原結合分子における抗原結合ドメインを作製するために用いられる抗体の可変領域は、通常、４つのフレームワーク領域（FR）にはさまれた３つの相補性決定領域（complementarity-determining　region　;　CDR）で構成されている。CDRは、実質的に、抗体の結合特異性を決定している領域である。CDRのアミノ酸配列は多様性に富む。一方FRを構成するアミノ酸配列は、異なる結合特異性を有する抗体の間でも、高い同一性を示すことが多い。そのため、一般に、CDRの移植によって、ある抗体の結合特異性を、他の抗体に移植することができるとされている。
　ヒト化抗体は、再構成（reshaped）ヒト抗体とも称される。具体的には、ヒト以外の動物、たとえばマウス抗体のCDRをヒト抗体に移植したヒト化抗体などが公知である。ヒト化抗体を得るための一般的な遺伝子組換え手法も知られている。具体的には、マウスの抗体のCDRをヒトのFRに移植するための方法として、たとえばOverlap　Extension　PCRが公知である。Overlap　Extension　PCRにおいては、ヒト抗体のFRを合成するためのプライマーに、移植すべきマウス抗体のCDRをコードする塩基配列が付加される。プライマーは４つのFRのそれぞれについて用意される。一般に、マウスCDRのヒトFRへの移植においては、マウスのFRと同一性の高いヒトFRを選択するのが、CDRの機能の維持において有利であるとされている。すなわち、一般に、移植すべきマウスCDRに隣接しているFRのアミノ酸配列と同一性の高いアミノ酸配列からなるヒトFRを利用するのが好ましい。
　また連結される塩基配列は、互いにインフレームで接続されるようにデザインされる。それぞれのプライマーによってヒトFRが個別に合成される。その結果、各FRにマウスCDRをコードするDNAが付加された産物が得られる。各産物のマウスCDRをコードする塩基配列は、互いにオーバーラップするようにデザインされている。続いて、ヒト抗体遺伝子を鋳型として合成された産物のオーバーラップしたCDR部分を互いにアニールさせて相補鎖合成反応が行われる。この反応によって、ヒトFRがマウスCDRの配列を介して連結される。
　最終的に３つのCDRと４つのFRが連結されたV領域遺伝子は、その5'末端と3'末端にアニールし適当な制限酵素認識配列を付加されたプライマーによってその全長が増幅される。上記のように得られたDNAとヒト抗体C領域をコードするDNAとをインフレームで融合するように発現ベクター中に挿入することによって、ヒト型抗体発現用ベクターが作成できる。当該組込みベクターを宿主に導入して組換え細胞を樹立した後に、当該組換え細胞を培養し、当該ヒト化抗体をコードするDNAを発現させることによって、当該ヒト化抗体が当該培養細胞の培養物中に産生される（欧州特許公開EP239400、国際公開WO1996/002576参照）。
　上記のように作製されたヒト化抗体の抗原への結合活性を定性的又は定量的に測定し、評価することによって、CDRを介して連結されたときに該CDRが良好な抗原結合部位を形成するようなヒト抗体のFRが好適に選択できる。必要に応じ、再構成ヒト抗体のCDRが適切な抗原結合部位を形成するようにFRのアミノ酸残基を置換することもできる。たとえば、マウスCDRのヒトFRへの移植に用いたPCR法を応用して、FRにアミノ酸配列の変異を導入することができる。具体的には、FRにアニーリングするプライマーに部分的な塩基配列の変異を導入することができる。このようなプライマーによって合成されたFRには、塩基配列の変異が導入される。アミノ酸を置換した変異型抗体の抗原への結合活性を上記の方法で測定し評価することによって所望の性質を有する変異FR配列が選択され得る（Cancer　Res.,　(1993)　53,　851-856）。
　また、ヒト抗体遺伝子の全てのレパートリーを有するトランスジェニック動物（国際公開WO1993/012227、WO1992/003918、WO1994/002602、WO1994/025585、WO1996/034096、WO1996/033735参照）を免疫動物とし、DNA免疫により所望のヒト抗体が取得され得る。
　さらに、ヒト抗体ライブラリを用いて、パンニングによりヒト抗体を取得する技術も知られている。例えば、ヒト抗体のV領域が一本鎖抗体（scFv）としてファージディスプレイ法によりファージの表面に発現される。抗原に結合するscFvを発現するファージが選択され得る。選択されたファージの遺伝子を解析することにより、抗原に結合するヒト抗体のV領域をコードするDNA配列が決定できる。抗原に結合するscFvのDNA配列を決定した後、当該V領域配列を所望のヒト抗体C領域の配列とインフレームで融合させた後に適当な発現ベクターに挿入することによって発現ベクターが作製され得る。当該発現ベクターを上記に挙げたような好適な発現細胞中に導入し、該ヒト抗体をコードする遺伝子を発現させることにより当該ヒト抗体が取得される。これらの方法は既に公知である（国際公開WO1992/001047、WO1992/020791、WO1993/006213、WO1993/011236、WO1993/019172、WO1995/001438、WO1995/015388参照）。
　また、抗体遺伝子を取得する方法としてBernasconiら（Science　(2002)　298,　2199-2202）またはWO2008/081008に記載のようなB細胞クローニング（それぞれの抗体のコード配列の同定およびクローニング、その単離、およびそれぞれの抗体（特に、IgG1、IgG2、IgG3またはIgG4）の作製のための発現ベクター構築のための使用等）の手法が、上記のほか適宜使用され得る。
EUナンバリングおよびKabatナンバリング
　本発明で使用されている方法によると、抗体のCDRとFRに割り当てられるアミノ酸位置はKabatにしたがって規定される（Sequences　of　Proteins　of　Immunological　Interest（National　Institute　of　Health,　Bethesda,　Md.,　1987年および1991年）。本明細書において、抗原結合分子が抗体または抗原結合断片である場合、可変領域のアミノ酸はKabatナンバリングにしたがい、定常領域のアミノ酸はKabatのアミノ酸位置に準じたEUナンバリングにしたがって表される。
FcRn
　免疫グロブリンスーパーファミリーに属するFcγレセプターと異なり、ヒトFcRnは構造的には主要組織不適合性複合体（MHC）クラスＩのポリペプチドに構造的に類似しクラスＩのMHC分子と22から29％の配列同一性を有する（Ghetieら，Immunol.　Today　(1997)　18　(12),　592-598）。FcRnは、可溶性βまたは軽鎖（β2マイクログロブリン）と複合体化された膜貫通αまたは重鎖よりなるヘテロダイマーとして発現される。MHCのように、FcRnのα鎖は３つの細胞外ドメイン（α１，α２，α３）よりなり、短い細胞質ドメインはタンパク質を細胞表面に繋留する。α１およびα２ドメインが抗体のFc領域中のFcRn結合ドメインと相互作用する（Raghavanら（Immunity　(1994)　1,　303-315）。
　FcRnは、哺乳動物の母性胎盤または卵黄嚢で発現され、それは母親から胎児へのIgGの移動に関与する。加えてFcRnが発現するげっ歯類新生児の小腸では、FcRnが摂取された初乳または乳から母性IgGの刷子縁上皮を横切る移動に関与する。FcRnは多数の種にわたって多数の他の組織、並びに種々の内皮細胞系において発現している。それはヒト成人血管内皮、筋肉血管系、および肝臓洞様毛細血管でも発現される。FcRnは、IgGに結合し、それを血清にリサイクルすることによって、IgGの血漿中濃度を維持する役割を演じていると考えられている。FcRnのIgG分子への結合は、通常、厳格にpHに依存的であり、最適結合は7.0未満のpH酸性域において認められる。
　配列番号：４（FcRn；NP＿004098.1）で表されたシグナル配列を含むポリペプチドを前駆体とするヒトFcRnは、生体内で（配列番号：５（beta2-microglobulin；NP＿004039.1）にシグナル配列を含むそのポリペプチドが記載されている）ヒトβ2-ミクログロブリンとの複合体を形成する。後に参考実施例で示されるように、β2-ミクログロブリンと複合体を形成している可溶型ヒトFcRnが通常の組換え発現手法を用いることによって製造される。このようなβ2-ミクログロブリンと複合体を形成している可溶型ヒトFcRnに対する本発明のFc領域の結合活性が評価され得る。本発明において、特に記載のない場合は、ヒトFcRnは本発明のFc領域に結合し得る形態であるものを指し、例としてヒトFcRnとヒトβ2-ミクログロブリンとの複合体が挙げられる。
FcRn結合ドメイン
　本発明の抗原結合分子は、FcRn結合ドメインを有する。FcRn結合ドメインは、抗原結合分子がpH酸性域においてFcRnに対する結合活性を有していれば特に限定されず、また、直接または間接的にFcRnに対して結合活性を有するドメインであってもよい。そのようなドメインとしては、例えば、直接的にFcRnに対する結合活性を有するIgG型免疫グロブリンのFc領域、アルブミン、アルブミンドメイン3、抗FcRn抗体、抗FcRnペプチド、抗FcRn足場（Scaffold）分子等、あるいは間接的にFcRnに対する結合活性を有するIgGやアルブミンに結合する分子等が好適に挙げられる。本発明においては、pH酸性域およびpH中性域においてFcRnに対する結合活性を有するドメインが好ましい。当該ドメインは、あらかじめpH酸性域においてFcRnに対する結合活性を有しているドメインであればそのまま好適に使用され得る。当該ドメインがpH酸性域においてFcRnに対する結合活性がない若しくは弱い場合には、抗原結合分子中のアミノ酸を改変してFcRnに対する結合活性を付与することが可能である。また、あらかじめpH酸性域においてFcRnに対する結合活性を有しているドメイン中のアミノ酸を改変して、FcRn結合活性を高めてもよい。FcRn結合ドメインのアミノ酸の改変は、アミノ酸改変前と改変後のpH酸性域におけるFcRnに対する結合活性を比較することによって目的の改変を見出すことができる。
　FcRn結合ドメインは、直接FcRnと結合する領域であることが好ましい。FcRn結合ドメインの好ましい例として、抗体のFc領域を挙げることができる。しかしながら、アルブミンやIgGなどのFcRnとの結合活性を有するポリペプチドに結合可能な領域は、アルブミンやIgGなどを介して間接的にFcRnと結合することが可能である。そのため、本発明におけるFcRn結合領域としては、FcRnとの結合活性を有するポリペプチドに結合する領域が好適に使用され得る。Fc領域は、抗体重鎖の定常領域に由来するアミノ酸配列を含む。Fc領域は、EUナンバリングで表されるおよそ216のアミノ酸における、パパイン切断部位のヒンジ領域のN末端から、当該ヒンジ、CH2およびCH3ドメインを含める抗体の重鎖定常領域の部分である。
　本発明におけるFcRn結合ドメインのFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性は、前記結合活性の項で述べられているように、当業者に公知の方法により測定することが可能であり、pH以外の条件については当業者が適宜決定することが可能である。抗原結合分子の抗原結合活性とヒトFcRn結合活性は、KD（Dissociation　constant：解離定数）、見かけのKD（Apparent　dissociation　constant：見かけの解離定数）、解離速度であるkd（Dissociation　rate：解離速度）、又は見かけのkd(Apparent　dissociation：見かけの解離速度)等として評価され得る。これらは当業者公知の方法で測定され得る。例えばBiacore　(GE　healthcare)、スキャッチャードプロット、フローサイトメーター等を使用され得る。
　FcRn結合ドメインのFcRnに対する結合活性を測定する際のpH以外の条件は当業者が適宜選択することが可能であり、特に限定されない。例えば、WO2009/125825に記載されているようにMESバッファー、37℃の条件において測定され得る。また、本発明のFcRn結合ドメインのFcRnに対する結合活性の測定は当業者公知の方法により行うことが可能であり、例えば、Biacore（GE　Healthcare）などを用いて測定され得る。FcRn結合ドメインとFcRnの結合活性の測定は、FcRn結合ドメインまたはFcRn結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子あるいはFcRnを固定化したチップへ、それぞれFcRnあるいはFcRn結合ドメインまたはFcRn結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子をアナライトとして流すことによって評価され得る。
　本発明の抗原結合分子に含まれるFcRn結合ドメインとFcRnとの結合活性を有する条件としてのpH酸性域とは、通常pH4.0～pH6.5を意味する。好ましくはpH5.5～pH6.5を意味し、特に好ましくは、生体内の早期エンドソーム内のpHに近いpH5.8～pH6.0を意味する。測定条件に使用される温度として、FcRn結合ドメインとFcRnとの結合アフィニティーは、10℃～50℃の任意の温度で評価してもよい。好ましくは、FcRn結合ドメインとヒトFcRnとの結合アフィニティーを決定するために、15℃～40℃の温度が使用される。より好ましくは、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、および35℃のいずれか1つのような20℃から35℃までの任意の温度も同様に、FcRn結合ドメインとFcRnとの結合アフィニティーを決定するために使用される。25℃という温度は本発明の態様の非限定な一例である。
　Yeungら（J.　Immunol.　(2009)　182,　7663-7671）によれば、天然型ヒトIgG1のヒトFcRnに対する結合活性はpH酸性域（pH6.0）でKD　1.7μMであるが、pH中性域では活性をほとんど検出できていない。よって、好ましい態様においては、pH酸性域の条件下でヒトFcRnに対する結合活性がKD　20μMまたはそれより強く、pH中性域の条件下でヒトFcRnに対する結合活性が天然型ヒトIgGと同等な抗原結合分子を含む、pH酸性域の条件下でヒトFcRnに対する結合活性を有する本発明の抗原結合分子が使用され得る。より好ましい態様においては、pH酸性域の条件下でヒトFcRn結合活性がKD　2.0μMまたはそれより強い抗原結合分子を含む本発明の抗原結合分子が使用され得る。さらにより好ましい態様においては、pH酸性域の条件下でヒトFcRn結合活性がKD　0.5μMまたはそれより強い抗原結合分子が使用され得る。上記のKD値は、The　Journal　of　Immunology　(2009)　182:　7663-7671に記載された方法（抗原結合分子をチップに固定し、アナライトとしてヒトFcRnを流す）によって決定される。
　本発明においては、pH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性を有するFc領域が好ましい。当該ドメインは、あらかじめpH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性を有しているFc領域であればそのまま用いられ得る。当該ドメインがpH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性がない若しくは弱い場合には、抗原結合分子中のアミノ酸を改変することによって所望のFcRnに対する結合活性を有するFc領域が取得され得るが、Fc領域中のアミノ酸を改変することによってpH酸性域の条件下で所望のFcRnに対する結合活性を有する、または増強されたFc領域も好適に取得され得る。そのような所望の結合活性をもたらすFc領域のアミノ酸改変は、アミノ酸改変前と改変後のpH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性を比較することによって見出され得る。本明細書のアミノ酸の改変の項で後述される公知の手法を用いて当業者は適宜アミノ酸の改変を実施することができる。
　本発明の抗原結合分子に含まれるpH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性を有するFc領域はいかなる方法によっても取得され得るが、具体的には、出発Fc領域として用いられるヒトIgG型免疫グロブリンのアミノ酸の改変によってpH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性を有する、または増強されたFcRn結合ドメインが取得され得る。改変のための好ましいIgG型免疫グロブリンのFc領域としては、例えばヒトIgG（IgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4、およびそれらの改変体）のFc領域が挙げられる。他のアミノ酸への改変は、pH酸性域の条件下でFcRnに対する結合活性を有する、もしくは酸性域の条件下でヒトFcRnに対する結合活性を高められるかぎり、いかなる位置のアミノ酸も改変され得る。抗原結合分子が、Fc領域としてヒトIgG1のFc領域を含んでいる場合、pH酸性域の条件下でFcRnに対する結合が、ヒトIgG1の出発Fc領域の結合活性より増強する効果をもたらす改変が含まれていることが好ましい。そのような改変が可能なアミノ酸として、例えば、WO2000/042072に記載されるように、EUナンバリングで表される238位、252位、253位、254位、255位、256位、265位、272位、286位、288位、303位、305位、307位、309位、311位、312位、317位、340位、356位、360位、362位、376位、378位、380位、382位、386位、388位、400位、413位、415位、424位、433位、434位、435位、436位、439位および/または447位のアミノ酸が好適に挙げられる。同様に、そのような改変が可能なアミノ酸として、例えばWO2002/060919に記載されているように、EUナンバリングで表される251位、252位、254位、255位、256位、308位、309位、311位、312位、385位、386位、387位、389位、428位、433位、434位および/または436位のアミノ酸も好適に挙げられる。さらに、そのような改変が可能なアミノ酸として、WO2004/092219に記載されているように、EUナンバリングで表される250位、314位および428位のアミノ酸も挙げられる。また、そのような改変が可能なアミノ酸として、例えばWO2010/045193に記載されているように、EUナンバリングで表される251位、252位、307位、308位、378位、428位、430位、434位および/または436位のアミノ酸も好適に挙げられる。これらのアミノ酸の改変によって、IgG型免疫グロブリンのFc領域のpH酸性域の条件下でFcRnに対する結合が増強される。
　例えばこれらのアミノ酸の改変を単独、あるいは複数を組み合わせて用いることによって、IgGのFc領域のpH酸性域におけるFcRnに対する結合を増強することが可能であるが、導入されるアミノ酸改変は特に限定されず、血漿中滞留性を改善する効果がもたらされる限りにおいて、どのようなアミノ酸改変が導入されても良い。
　また、本発明の非限定の一態様では、FcRn結合ドメインとしてFcRn、特にヒトFcRnに対する結合活性を有する抗原結合ドメインも適宜使用され得る。前記されたように、本発明の抗原結合分子として二重特異性抗体も適宜使用され得るが、当該二重特異性抗体が結合する一方のエピトープがFcRn以外の所望の抗原に存在するエピトープであり、もう一方のエピトープがFcRnに存在するエピトープである二重特異性抗体が好適に挙げられる。二重特異性抗体の構造は、所望の抗原とFcRnに対する結合価を有する二価の結合ドメインおよび糖鎖受容体結合ドメインを含む限り、特定の構造に限定されることはない。例えば、Fc領域が連結されたIgG型抗体のような抗体の構造も使用され得るし、「scFv2（single　chain　Fv　2）」、「diabody」、または「F(ab')2」等も好適に使用され得る。IgG型抗体のような抗体の構造が使用されるときは、糖鎖結合ドメインがFc領域にも含まれ得るし、FcRn結合ドメインおよび/または抗原結合ドメインにも含まれ得る。また、「scFv2（single　chain　Fv　2）」、「diabody」、または「F(ab')2」のような構造が使用されるときは、糖鎖結合ドメインがFcRn結合ドメインおよび/または抗原結合ドメインにも含まれ得る。
　このような二重特異性抗体が使用されるときは、FcRn結合ドメインとして、「イオン濃度の条件」の項で後述されるようなイオン濃度の条件によってFcRnに対する結合が変化するFcRn結合ドメインが適宜使用され得る。すなわち、本発明の非限定な一態様では、「イオン濃度の条件」の項で後述されるように、FcRn結合ドメインのFcRnに対する結合が金属イオン濃度の条件やpHの条件によってFcRnに対する結合活性が変化するFcRn結合ドメインが使用され得る。
イオン濃度の条件
（１）金属イオン濃度の条件
　本発明の非限定の一態様では、イオン濃度とは金属イオン濃度のことをいう。「金属イオン」とは、水素を除くアルカリ金属および銅族等の第I族、アルカリ土類金属および亜鉛族等の第II族、ホウ素を除く第III族、炭素とケイ素を除く第IV族、鉄族および白金族等の第VIII族、V、VIおよびVII族の各A亜族に属する元素と、アンチモン、ビスマス、ポロニウム等の金属元素のイオンをいう。金属原子は原子価電子を放出して陽イオンになる性質を有しており、これをイオン化傾向という。イオン化傾向の大きい金属は、化学的に活性に富むとされる。
　本発明で好適な金属イオンの例としてカルシウムイオンが挙げられる。カルシウムイオンは多くの生命現象の調節に関与しており、骨格筋、平滑筋および心筋等の筋肉の収縮、白血球の運動および貪食等の活性化、血小板の変形および分泌等の活性化、リンパ球の活性化、ヒスタミンの分泌等の肥満細胞の活性化、カテコールアミンα受容体やアセチルコリン受容体を介する細胞の応答、エキソサイトーシス、ニューロン終末からの伝達物質の放出、ニューロンの軸策流等にカルシウムイオンが関与している。細胞内のカルシウムイオン受容体として、複数個のカルシウムイオン結合部位を有し、分子進化上共通の起源から由来したと考えられるトロポニンC、カルモジュリン、パルブアルブミン、ミオシン軽鎖等が知られており、その結合モチーフも数多く知られている。例えば、カドヘリンドメイン、カルモジュリンに含まれるEFハンド、Protein　kinase　Cに含まれるC2ドメイン、血液凝固タンパク質FactorIXに含まれるGlaドメイン、アシアログライコプロテインレセプターやマンノースレセプターに含まれるC型レクチン、LDL受容体に含まれるAドメイン、アネキシン、トロンボスポンジン3型ドメインおよびEGF様ドメインがよく知られている。
　本発明においては、金属イオンがカルシウムイオンの場合には、カルシウムイオン濃度の条件として低カルシウムイオン濃度の条件と高カルシウムイオン濃度の条件が挙げられる。カルシウムイオン濃度の条件によって結合活性が変化するとは、低カルシウムイオン濃度と高カルシウムイオン濃度の条件の違いによって抗原に対する抗原結合分子の結合活性が変化することをいう。例えば、低カルシウムイオン濃度の条件下における抗原に対する抗原結合分子の結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下における抗原に対する抗原結合分子の結合活性の方が高い場合が挙げられる。また、高カルシウムイオン濃度の条件下における抗原に対する抗原結合分子の結合活性よりも低カルシウムイオン濃度の条件下における抗原に対する抗原結合分子の結合活性の方が高い場合もまた挙げられる。
　本明細書において、高カルシウムイオン濃度とはとくに一義的な数値に限定されるわけではないが、好適には100μMから10　mMの間から選択される濃度であり得る。また、別の態様では、200μMから5　mMの間から選択される濃度でもあり得る。また、異なる態様では500μMから2.5　mMの間から選択される濃度でもあり得るし、ほかの態様では200μMから2　mMの間から選択される濃度でもあり得る。さらに400μMから1.5　mMの間から選択される濃度でもあり得る。特に生体内の血漿中（血中）でのカルシウムイオン濃度に近い500μMから2.5　mMの間から選択される濃度が好適に挙げられる。
　本明細書において、低カルシウムイオン濃度とはとくに一義的な数値に限定されるわけではないが、好適には0.1μMから30μMの間から選択される濃度であり得る。また、別の態様では、0.2μMから20μMの間から選択される濃度でもあり得る。また、異なる態様では0.5μMから10μMの間から選択される濃度でもあり得るし、ほかの態様では1μMから5μMの間から選択される濃度でもあり得る。さらに2μMから4μMの間から選択される濃度でもあり得る。特に生体内の早期エンドソーム内でのイオン化カルシウム濃度に近い1μMから5μMの間から選択される濃度が好適に挙げられる。
　本発明において、低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低いとは、抗原結合分子の0.1　μMから30μMの間から選択されるカルシウムイオン濃度での抗原に対する結合活性が、100μMから10　mMの間から選択されるカルシウムイオン濃度での抗原に対する結合活性より弱いことを意味する。好ましくは、抗原結合分子の0.5μMから10μMの間から選択されるカルシウムイオン濃度での抗原に対する結合活性が、200μMから5　mMの間から選択されるカルシウムイオン濃度での抗原に対する結合活性より弱いことを意味し、特に好ましくは、生体内の早期エンドソーム内のカルシウムイオン濃度における抗原結合活性が、生体内の血漿中のカルシウムイオン濃度における抗原結合活性より弱いことを意味し、具体的には、抗原結合分子の1μMから5μMの間から選択されるカルシウムイオン濃度での抗原に対する結合活性が、500μMから2.5　mMの間から選択されるカルシウムイオン濃度での抗原に対する結合活性より弱いことを意味する。
　金属イオン濃度の条件によって抗原に対する本発明の抗原結合ドメインの結合活性が変化しているか否かは、例えば前記の結合活性の項で記載されたような公知の測定方法を使用することによって決定され得る。例えば、低カルシウムイオン濃度の条件下における本発明の抗原結合ドメインを含む抗原結合分子の抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下における当該抗原結合ドメインを含む抗原結合分子の抗原に対する結合活性の方が高く変化することを確認するためには、低カルシウムイオン濃度および高カルシウムイオン濃度の条件下における抗原に対する抗原結合ドメインを含む抗原結合分子の結合活性が比較される。
　さらに本発明において、「低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い」という表現は、抗原結合分子の高カルシウムイオン濃度条件下における抗原に対する結合活性が低カルシウムイオン濃度条件下における抗原に対する結合活性よりも高いと表現することもできる。なお本発明においては、「低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い」を「低カルシウムイオン濃度条件下における抗原結合能が高カルシウムイオン濃度条件下における抗原に対する結合能よりも弱い」と記載する場合もあり、また、「低カルシウムイオン濃度の条件における抗原結合活性を高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低下させる」を「低カルシウムイオン濃度条件下における抗原結合能を高カルシウムイオン濃度条件下における抗原に対する結合能よりも弱くする」と記載する場合もある。
　抗原に対する結合活性を測定する際のカルシウムイオン濃度以外の条件は、当業者が適宜選択することが可能であり、特に限定されない。例えば、HEPESバッファー、37℃の条件において測定することが可能である。例えば、Biacore（GE　Healthcare）などを用いて測定することが可能である。抗原結合ドメインを含む抗原結合分子と抗原との結合活性の測定は、抗原が可溶型抗原である場合は、抗原結合ドメインを含む抗原結合分子を固定化したチップへ、抗原をアナライトとして流すことで可溶型抗原に対する結合活性を評価することが可能であり、抗原が膜型抗原である場合は、抗原を固定化したチップへ、抗原結合ドメインを含む抗原結合分子をアナライトとして流すことで膜型抗原に対する結合活性を評価することが可能である。
　本発明の抗原結合分子において、低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性よりも弱い限り、低カルシウムイオン濃度条件下における抗原に対する結合活性と高カルシウムイオン濃度条件下における抗原に対する結合活性の比は特に限定されないが、好ましくは抗原に対する低カルシウムイオン濃度の条件におけるKD（Dissociation　constant：解離定数）と高カルシウムイオン濃度の条件におけるKDの比であるKD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　2　mM)の値が２以上であり、さらに好ましくはKD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　2　mM)の値が10以上であり、さらに好ましくはKD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　2　mM)の値が40以上である。KD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　2　mM)の値の上限は特に限定されず、当業者の技術において作製可能な限り、400、1000、10000等、いかなる値でもよい。また、KD　(Ca3μM)/KD　(Ca　1.2　mM)の値でも特定され得る。すなわち、KD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　1.2　mM)の値が２以上であり、さらに好ましくはKD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　1.2　mM)の値が10以上であり、さらに好ましくはKD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　1.2　mM)の値が40以上である。KD　(Ca　3μM)/KD　(Ca　1.2　mM)の値の上限は特に限定されず、当業者の技術において作製可能な限り、400、1000、10000等、いかなる値でもよい。
　抗原に対する結合活性の値として、抗原が可溶型抗原の場合はKD（解離定数）を用いることが可能であるが、抗原が膜型抗原の場合は見かけのKD（Apparent　dissociation　constant：見かけの解離定数）を用いることが可能である。KD（解離定数）、および、見かけのKD（見かけの解離定数）は、当業者公知の方法で測定することが可能であり、例えばBiacore（GE　healthcare）、スキャッチャードプロット、フローサイトメーター等を用いることが可能である。
　また、本発明の抗原結合分子の低カルシウム濃度の条件における抗原に対する結合活性と高カルシウム濃度の条件における抗原に対する結合活性の比を示す他の指標として、例えば、解離速度定数であるkd（Dissociation　rate　constant：解離速度定数）もまた好適に用いられ得る。結合活性の比を示す指標としてKD（解離定数）の代わりにkd（解離速度定数）を用いる場合、抗原に対する低カルシウム濃度の条件におけるkd（解離速度定数）と高カルシウム濃度の条件におけるkd（解離速度定数）の比であるkd（低カルシウム濃度の条件）/kd（高カルシウム濃度の条件）の値は、好ましくは2以上であり、さらに好ましくは5以上であり、さらに好ましくは10以上であり、より好ましくは30以上である。Kd（低カルシウム濃度の条件）/kd（高カルシウム濃度の条件）の値の上限は特に限定されず、当業者の技術常識において作製可能な限り、50、100、200等、いかなる値でもよい。
　抗原結合活性の値として、抗原が可溶型抗原の場合はkd（解離速度定数）を用いることが可能であり、抗原が膜型抗原の場合は見かけのkd（Apparent　dissociation　rate　constant：見かけの解離速度定数）を用いることが可能である。kd（解離速度定数）、および、見かけのkd（見かけの解離速度定数）は、当業者公知の方法で測定することが可能であり、例えばBiacore（GE　healthcare）、フローサイトメーター等を用いることが可能である。なお本発明において、異なるカルシウムイオン濃度における抗原結合分子の抗原に対する結合活性を測定する際は、カルシウム濃度以外の条件は同一とすることが好ましい。
　例えば、本発明が提供する一つの態様である低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が、高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(c)を含む抗原結合ドメインまたは抗体のスクリーニングによって取得され得る。
(a)　低カルシウム濃度の条件における抗原結合ドメインまたは抗体の抗原結合活性を得る工程、
(b)　高カルシウム濃度の条件における抗原結合ドメインまたは抗体の抗原結合活性を得る工程、および
(c)　低カルシウム濃度の条件における抗原結合活性が、高カルシウム濃度の条件における抗原結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体を選択する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が、高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(c)を含む抗原結合ドメインまたは抗体もしくはそれらのライブラリのスクリーニングによって取得され得る。
(a)　高カルシウム濃度の条件における抗原結合ドメインまたは抗体もしくはそれらのライブラリを抗原に接触させる工程、
(b)　前記工程(a)で抗原に結合した抗原結合ドメインまたは抗体を低カルシウム濃度条件下に置く工程、および
(c)　前記工程(b)で解離した抗原結合ドメインまたは抗体を単離する工程。
　また、本発明が提供する一つの態様である低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が、高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(d)を含む抗原結合ドメインまたは抗体若しくはそれらのライブラリのスクリーニングによって取得され得る。
(a)　低カルシウム濃度条件下で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを抗原に接触させる工程、
(b)　前記工程(a)で抗原に結合しない抗原結合ドメイン又は抗体を選択する工程、
(c)　前記工程(b)で選択された抗原結合ドメイン又は抗体を高カルシウム濃度条件下で抗原に結合させる工程、および
(d)　前記工程(c)で抗原に結合した抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が、高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(c)を含むスクリーニング方法によって取得され得る。
(a)　抗原を固定したカラムに高カルシウム濃度条件下で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを接触させる工程、
(b)　前記工程(a)でカラムに結合した抗原結合ドメイン又は抗体を低カルシウム濃度条件下でカラムから溶出する工程、および
(c)　前記工程(b)で溶出された抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が、高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(d)を含むスクリーニング方法によって取得され得る。
(a)　抗原を固定したカラムに低カルシウム濃度条件下で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを通過させる工程、
(b)　前記工程(a)でカラムに結合せずに溶出した抗原結合ドメイン又は抗体を回収する工程、
(c)　前記工程(b)で回収された抗原結合ドメイン又は抗体を高カルシウム濃度条件下で抗原に結合させる工程、および
(d)　前記工程(c)で抗原に結合した抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が、高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(d)を含むスクリーニング方法によって取得され得る。
(a)　高カルシウム濃度条件下で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを抗原に接触させる工程、
(b)　前記工程(a)で抗原に結合した抗原結合ドメイン又は抗体を取得する工程、
(c)　前記工程(b)で取得した抗原結合ドメイン又は抗体を低カルシウム濃度条件下に置く工程、および
(d)　前記工程(c)で抗原結合活性が、前記工程(b)で選択した基準より弱い抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　なお、前記の工程は2回以上繰り返されてもよい。従って、本発明によって、上述のスクリーニング方法において、(a)～(c)あるいは(a)～(d)の工程を2回以上繰り返す工程をさらに含むスクリーニング方法によって取得された低カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性が高カルシウムイオン濃度の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体が提供される。(a)～(c)あるいは(a)～(d)の工程が繰り返される回数は特に限定されないが、通常10回以内である。
　本発明のスクリーニング方法において、低カルシウム濃度条件下における抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は、イオン化カルシウム濃度が0.1μM～30μMの間の抗原結合活性であれば特に限定されないが、好ましいイオン化カルシウム濃度として、0.5μM～10μMの間の抗原結合活性を挙げることができる。より好ましいイオン化カルシウム濃度として、生体内の早期エンドソーム内のイオン化カルシウム濃度が挙げられ、具体的には1μM～5μMにおける抗原結合活性を挙げることができる。また、高カルシウム濃度条件下における抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は、イオン化カルシウム濃度が100μM～10　mMの間の抗原結合活性であれば特に限定されないが、好ましいイオン化カルシウム濃度として200μM～5　mMの間の抗原結合活性を挙げることができる。より好ましいイオン化カルシウム濃度として、生体内の血漿中でのイオン化カルシウム濃度を挙げることができ、具体的には0.5　mM～2.5　mMにおける抗原結合活性を挙げることができる。
　抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は当業者に公知の方法により測定することが可能であり、イオン化カルシウム濃度以外の条件については当業者が適宜決定することが可能である。抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は、KD（Dissociation　constant：解離定数）、見かけのKD（Apparent　dissociation　constant：見かけの解離定数）、解離速度であるkd（Dissociation　rate：解離速度定数）、又は見かけのkd（Apparent　dissociation：見かけの解離速度定数）等として評価することが可能である。これらは当業者公知の方法で測定することが可能であり、例えばBiacore（GE　healthcare）、スキャッチャードプロット、FACS等を用いることが可能である。
　本発明において、高カルシウム濃度条件下における抗原結合活性が低カルシウム濃度条件下における抗原結合活性より高い抗原結合ドメイン又は抗体を選択する工程は、低カルシウム濃度条件下における抗原結合活性が高カルシウム濃度条件下における抗原結合活性より低い抗原結合ドメイン又は抗体を選択する工程と同じ意味である。
　高カルシウム濃度条件下における抗原結合活性が低カルシウム濃度条件下における抗原結合活性より高い限り、高カルシウム濃度条件下における抗原結合活性と低カルシウム濃度条件下における抗原結合活性の差は特に限定されないが、好ましくは高カルシウム濃度条件下における抗原結合活性が低カルシウム濃度条件下における抗原結合活性の2倍以上であり、さらに好ましくは10倍以上であり、より好ましくは40倍以上である。
　前記のスクリーニング方法によりスクリーニングされる本発明の抗原結合ドメイン又は抗体はいかなる抗原結合ドメイン又は抗体でもよく、例えば上述の抗原結合ドメイン又は抗体をスクリーニングすることが可能である。例えば、天然の配列を有する抗原結合ドメイン又は抗体をスクリーニングしてもよいし、アミノ酸配列が置換された抗原結合ドメイン又は抗体をスクリーニングしてもよい。
（２）カルシウムイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合ドメインの結合活性が変化するアミノ酸
　前記のスクリーニング方法によってスクリーニングされる本発明の抗原結合ドメイン又は抗体はどのように調製されてもよく、例えば、金属イオンがカルシウムイオン濃度である場合には、あらかじめ存在している抗体、あらかじめ存在しているライブラリ（ファージライブラリ等）、動物への免疫から得られたハイブリドーマや免疫動物からのB細胞から作製された抗体又はライブラリ、これらの抗体やライブラリにカルシウムをキレート可能なアミノ酸（例えばアスパラギン酸やグルタミン酸）や非天然アミノ酸変異を導入した抗体又はライブラリ（カルシウムをキレート可能なアミノ酸（例えばアスパラギン酸やグルタミン酸）又は非天然アミノ酸の含有率を高くしたライブラリや特定箇所にカルシウムをキレート可能なアミノ酸（例えばアスパラギン酸やグルタミン酸）又は非天然アミノ酸変異を導入したライブラリ等）などを用いることが可能である。
　前記のようにイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性を変化させるアミノ酸の例として、例えば、金属イオンがカルシウムイオンである場合には、カルシウム結合モチーフを形成するアミノ酸であれば、その種類は問わない。カルシウム結合モチーフは、当業者に周知であり、詳細に記載されている（例えばSpringerら（Cell　(2000)　102,　275-277）、KawasakiおよびKretsinger（Protein　Prof.　(1995)　2,　305-490）、Moncriefら（J.　Mol.　Evol.　(1990)　30,　522-562）、Chauvauxら（Biochem.　J.　(1990)　265,　261-265）、BairochおよびCox（FEBS　Lett.　(1990)　269,　454-456）、Davis（New　Biol.　(1990)　2,　410-419）、Schaeferら（Genomics　(1995)　25,　638～643）、Economouら（EMBO　J.　(1990)　9,　349-354）、Wurzburgら（Structure.　(2006)　14,　6,　1049-1058））。すなわち、ASGPR,　CD23、MBR、DC-SIGN等のC型レクチン等の任意の公知のカルシウム結合モチーフが、本発明の抗原結合分子に含まれ得る。このようなカルシウム結合モチーフの好適な例として、上記のほかには配列番号：６に記載される抗原結合ドメインに含まれるカルシウム結合モチーフも挙げられ得る。
　また、カルシウムイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性が変化するアミノ酸の例として、金属キレート作用を有するアミノ酸も好適に用いられる得る。金属キレート作用を有するアミノ酸の例として、例えばセリン（Ser（S））、スレオニン（Thr（T））、アスパラギン（Asn（N））、グルタミン（Gln（Q））、アスパラギン酸（Asp（D））およびグルタミン酸（Glu（E））等が好適に挙げられる。
　前記のアミノ酸が含まれる抗原結合ドメインの位置は特定の位置に限定されず、カルシウムイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性を変化させる限り、抗原結合ドメインを形成する重鎖可変領域または軽鎖可変領域中のいずれの位置でもあり得る。すなわち、本発明の抗原結合ドメインは、カルシウムイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性を変化させるアミノ酸が重鎖の抗原結合ドメインに含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。また、別の非限定の態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸が重鎖のCDR3に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。そのほかの非限定の態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸が重鎖のCDR3のKabatナンバリングで表される95位、96位、100a位および/または101位に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。
　また、本発明の非限定の一態様では、本発明の抗原結合ドメインは、カルシウムイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性を変化させるアミノ酸が軽鎖の抗原結合ドメインに含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。また、別の態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸が軽鎖のCDR1に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。そのほかの態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸が軽鎖のCDR1のKabatナンバリングで表される30位、31位および/または32位に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。
　また、別の非限定の態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR2に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。そのほかの態様では、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR2のKabatナンバリングで表される50位に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリが提供される。
　さらに別の非限定の態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR3に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。そのほかの態様では、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR3のKabatナンバリングで表される92位に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。
　また、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸残基が、前記に記載された軽鎖のCDR1、CDR2およびCDR3から選択される2つまたは3つのCDRに含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから本発明の異なる態様として取得され得る。さらに、本発明の抗原結合ドメインは、当該アミノ酸残基が軽鎖のKabatナンバリングで表される30位、31位、32位、50位および/または92位のいずれかひとつ以上に含まれている互いに配列の異なる抗原結合分子から主としてなるライブラリから取得され得る。
　また、これらのアミノ酸残基が、カルシウム結合モチーフを形成し、および/または、カルシウムイオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性が変化する限り、これらのアミノ酸残基が単独で含まれ得るし、これらのアミノ酸が二つ以上組み合わされて含まれ得る。また、複数個のカルシウムイオン結合部位を有し、分子進化上共通の起源から由来したと考えられるトロポニンC、カルモジュリン、パルブアルブミン、ミオシン軽鎖等が知られており、その結合モチーフが含まれるように軽鎖CDR1、CDR2および/またはCDR3を設計することも可能である。例えば、上記の目的でカドヘリンドメイン、カルモジュリンに含まれるEFハンド、Protein　kinase　Cに含まれるC2ドメイン、血液凝固タンパク質FactorIXに含まれるGlaドメイン、アシアログライコプロテインレセプターやマンノースレセプターに含まれるC型レクチン、LDL受容体に含まれるAドメイン、アネキシン、トロンボスポンジン3型ドメインおよびEGF様ドメインが適宜使用され得る。
　本発明の一つの態様では、「イオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性を変化させる少なくとも一つのアミノ酸残基」が予め含まれているフレームワーク配列として選択された重鎖可変領域と、ランダム化可変領域配列ライブラリとして作製された軽鎖可変領域とを組み合わせることによって本発明の複数の互いに配列の異なる抗原結合分子を含むライブラリから、本発明の抗原結合ドメインが取得され得る。このような非限定的な例として、イオン濃度がカルシウムイオン濃度である場合には、例えば、配列番号：７（6RL#9-IgG1）または配列番号：８（6KC4-1#85-IgG1）に記載された重鎖可変領域配列とランダム化可変領域配列ライブラリとして作製された軽鎖可変領域とを組み合わせたライブラリが好適に挙げられる。また、ランダム化可変領域配列ライブラリとして作製された軽鎖可変領域の代わりに、生殖細胞系列の配列を有する軽鎖可変領域の中から適宜選択することによって作製され得る。例えば、配列番号：７（6RL#9-IgG1）または配列番号：８（6KC4-1#85-IgG1）に記載された重鎖可変領域配列と生殖細胞系列の配列を有する軽鎖可変領域とを組み合わせたライブラリが好適に挙げられる。
　本明細書において「ライブラリ」とは複数の抗原結合分子または抗原結合分子を含む複数の融合ポリペプチド、もしくはこれらの配列をコードする核酸、ポリヌクレオチドをいう。ライブラリ中に含まれる複数の抗原結合分子または抗原結合分子を含む複数の融合ポリペプチドの配列は単一の配列ではなく、互いに配列の異なる抗原結合分子または抗原結合分子を含む融合ポリペプチドである。こうしたライブラリとしてバクテリオファージの表面で抗体断片を含んでいる融合ポリペプチドを提示する方法は当技術分野で公知であり、例えばWO1992001047および本明細書で記載されている。他にもWO1992020791、WO1993006213、WO1993011236および1993019172では関連した方法が記載されており、当業者はこれらの方法を適宜使用することが可能である。他の公知文献（H.R.Hoogenboom　&　G.Winter　(1992)　J.　Mol.　Biol.　227,　381-388、WO1993006213およびWO1993011236）では、ファージ表面で提示された様々な抗原に対する、人工的に再配置された可変領域遺伝子レパートリーによる抗体の同定が示されている。
（３）水素イオン濃度の条件
　また、本発明の一つの態様では、イオン濃度の条件とは水素イオン濃度の条件またはpHの条件をいう。本発明で、プロトンすなわち水素原子の原子核の濃度の条件は、水素指数（pH）の条件とも同義に取り扱われる。水溶液中の水素イオンの活動量をaH+で表すと、pHは-log10aH+と定義される。水溶液中のイオン強度が（例えば10-3より）低ければ、aH+は水素イオン強度にほぼ等しい。例えば25℃、1気圧における水のイオン積はKw=aH+aOH=10-14であるため、純水ではaH+=aOH=10-7である。この場合のpH=7が中性であり、pHが7より小さい水溶液は酸性、pHが7より大きい水溶液はアルカリ性である。
　本発明においては、イオン濃度の条件としてpHの条件が用いられる場合には、pHの条件として高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件と低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件が挙げられる。pHの条件によって結合活性が変化するとは、高水素イオン濃度または低pH（pH酸性域）と低水素イオン濃度または高pH（pH中性域）の条件の違いによって抗原に対する抗原結合分子の結合活性が変化することをいう。例えば、pH酸性域の条件における抗原に対する抗原結合分子の結合活性よりもpH中性域の条件における抗原に対する抗原結合分子の結合活性の方が高い場合が挙げられる。また、pH中性域の条件における抗原に対する抗原結合分子の結合活性よりもpH酸性域の条件における抗原に対する抗原結合分子の結合活性の方が高い場合もまた挙げられる。
　本明細書において、pH中性域とはとくに一義的な数値に限定されるわけではないが、好適にはpH6.7からpH10.0の間から選択され得る。また、別の態様では、pH6.7からpH9.5の間から選択され得る。また、異なる態様ではpH7.0からpH9.0の間から選択され得るし、ほかの態様ではpH7.0からpH8.0の間から選択され得る。特に生体内の血漿中（血中）でのpHに近いpH7.4が好適に挙げられる。
本明細書において、pH酸性域とはとくに一義的な数値に限定されるわけではないが、好適にはpH4.0からpH6.5の間から選択され得る。また、別の態様では、pH4.5からpH6.5の間から選択され得る。また、異なる態様ではpH5.0からpH6.5の間から選択され得るし、ほかの態様ではpH5.5からpH6.5の間から選択され得る。特に生体内の早期エンドソーム内でのイオン化カルシウム濃度に近いpH5.8が好適に挙げられる。
　本発明において、抗原結合分子の高水素イオン濃度または低pH（pH酸性域）の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pH（pH中性域）の条件における抗原に対する結合活性より低いとは、抗原結合分子のpH4.0からpH6.5の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性が、pH6.7からpH10.0の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性より弱いことを意味する。好ましくは、抗原結合分子のpH4.5からpH6.5の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性が、pH6.7からpH9.5の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性より弱いことを意味し、より好ましくは、抗原結合分子のpH5.0からpH6.5の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性が、pH7.0からpH9.0の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性より弱いことを意味する。また、好ましくは抗原結合分子のpH5.5からpH6.5の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性が、pH7.0からpH8.0の間から選択されるpHでの抗原に対する結合活性より弱いことを意味する。特に好ましくは、生体内の早期エンドソーム内のpHにおける抗原結合活性が、生体内の血漿中のpHにおける抗原結合活性より弱いことを意味し、具体的には、抗原結合分子のpH5.8での抗原に対する結合活性が、pH7.4での抗原に対する結合活性より弱いことを意味する。
　pHの条件によって抗原に対する本発明の抗原結合ドメインの結合活性が変化しているか否かは、例えば前記の結合活性の項で記載されたような公知の測定方法を使用することによって決定され得る。すなわち、当該測定方法に際して異なるpHの条件下での結合活性が測定される。例えば、pH酸性域の条件下における本発明の抗原結合ドメインを含む抗原結合分子の抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下における本発明の抗原結合ドメインを含む抗原結合分子の抗原に対する結合活性の方が高く変化することを確認するためには、pH酸性域およびpH中性域の条件下における抗原に対する抗原結合分子の結合活性が比較される。
　さらに本発明において、「高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い」という表現は、抗原結合分子の低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性が高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性よりも高いと表現することもできる。なお本発明においては、「高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い」を「高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合能よりも弱い」と記載する場合もあり、また、「高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低下させる」を「高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合能よりも弱くする」と記載する場合もある。
　抗原に対する結合活性を測定する際の水素イオン濃度またはpH以外の条件は、当業者が適宜選択することが可能であり、特に限定されない。例えば、HEPESバッファー、37℃の条件において測定することが可能である。例えば、Biacore（GE　Healthcare）などを用いて測定することが可能である。抗原結合ドメインを含む抗原結合分子と抗原との結合活性の測定は、抗原が可溶型抗原である場合は、抗原結合ドメインを含む抗原結合分子を固定化したチップへ、抗原をアナライトとして流すことで可溶型抗原に対する結合活性を評価することが可能であり、抗原が膜型抗原である場合は、抗原を固定化したチップへ、抗原結合ドメインを含む抗原結合分子をアナライトとして流すことで膜型抗原に対する結合活性を評価することが可能である。
　本発明の抗原結合分子において、高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性よりも弱い限り、高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件下における抗原に対する結合活性と低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件下における抗原に対する結合活性の比は特に限定されないが、好ましくは抗原に対する高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件におけるKD（Dissociation　constant：解離定数）と低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件におけるKDの比であるKD　(pH5.8)/KD　(pH7.4)の値が２以上であり、さらに好ましくはKD　(pH5.8)/KD　(pH7.4)の値が10以上であり、さらに好ましくはKD　(pH5.8)/KD　(pH7.4)の値が40以上である。KD　(pH5.8)/KD　(pH7.4)の値の上限は特に限定されず、当業者の技術において作製可能な限り、400、1000、10000等、いかなる値でもよい。
　抗原に対する結合活性の値として、抗原が可溶型抗原の場合はKD（解離定数）を用いることが可能であるが、抗原が膜型抗原の場合は見かけのKD（Apparent　dissociation　constant：見かけの解離定数）を用いることが可能である。KD（解離定数）、および、見かけのKD（見かけの解離定数）は、当業者公知の方法で測定することが可能であり、例えばBiacore（GE　healthcare）、スキャッチャードプロット、フローサイトメーター等を用いることが可能である。
　また、本発明の抗原結合分子の高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性と低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性の比を示す他の指標として、例えば、解離速度定数であるkd（Dissociation　rate　constant：解離速度定数）もまた好適に用いられ得る。結合活性の比を示す指標としてKD（解離定数）の代わりにkd（解離速度定数）を用いる場合、抗原に対する高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件におけるkd（解離速度定数）と低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件におけるkd（解離速度定数）の比であるkd（pH酸性域の条件における）/kd（pH中性域の条件における）の値は、好ましくは2以上であり、さらに好ましくは5以上であり、さらに好ましくは10以上であり、より好ましくは30以上である。Kd（pH酸性域の条件における）/kd（pH中性域の条件における）の値の上限は特に限定されず、当業者の技術常識において作製可能な限り、50、100、200等、いかなる値でもよい。
　抗原結合活性の値として、抗原が可溶型抗原の場合はkd（解離速度定数）を用いることが可能であり、抗原が膜型抗原の場合は見かけのkd（Apparent　dissociation　rate　constant：見かけの解離速度定数）を用いることが可能である。kd（解離速度定数）、および、見かけのkd（見かけの解離速度定数）は、当業者公知の方法で測定することが可能であり、例えばBiacore（GE　healthcare）、フローサイトメーター等を用いることが可能である。なお本発明において、異なる水素イオン濃度すなわちpHにおける抗原結合分子の抗原に対する結合活性を測定する際は、水素イオン濃度すなわちpH以外の条件は同一とすることが好ましい。
　例えば、本発明が提供する一つの態様である高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(c)を含む抗原結合ドメインまたは抗体のスクリーニングによって取得され得る。
(a)　　pH酸性域の条件における抗原結合ドメインまたは抗体の抗原結合活性を得る工程、
(b)　　pH中性域の条件における抗原結合ドメインまたは抗体の抗原結合活性を得る工程、および
(c)　　pH酸性域の条件における抗原結合活性が、pH中性域の条件における抗原結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体を選択する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(c)を含む抗原結合ドメインまたは抗体もしくはそれらのライブラリのスクリーニングによって取得され得る。
(a)　　pH中性域の条件における抗原結合ドメインまたは抗体もしくはそれらのライブラリを抗原に接触させる工程、
(b)　前記工程(a)で抗原に結合した抗原結合ドメインまたは抗体をpH酸性域の条件に置く工程、および
(c)　前記工程(b)で解離した抗原結合ドメインまたは抗体を単離する工程。
　また、本発明が提供する一つの態様である高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(d)を含む抗原結合ドメインまたは抗体若しくはそれらのライブラリのスクリーニングによって取得され得る。
(a)　　pH酸性域の条件で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを抗原に接触させる工程、
(b)　前記工程(a)で抗原に結合しない抗原結合ドメイン又は抗体を選択する工程、
(c)　前記工程(b)で選択された抗原結合ドメイン又は抗体をpH中性域の条件で抗原に結合させる工程、および
(d)　前記工程(c)で抗原に結合した抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(c)を含むスクリーニング方法によって取得され得る。
(a)　抗原を固定したカラムにpH中性域の条件で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを接触させる工程、
(b)　前記工程(a)でカラムに結合した抗原結合ドメイン又は抗体をpH酸性域の条件でカラムから溶出する工程、および
(c)　前記工程(b)で溶出された抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(d)を含むスクリーニング方法によって取得され得る。
(a)　抗原を固定したカラムにpH酸性域の条件で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを通過させる工程、
(b)　前記工程(a)でカラムに結合せずに溶出した抗原結合ドメイン又は抗体を回収する工程、
(c)　前記工程(b)で回収された抗原結合ドメイン又は抗体をpH中性域の条件で抗原に結合させる工程、および
(d)　前記工程(c)で抗原に結合した抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　さらに、本発明が提供する一つの態様である高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性が、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体は、以下の工程(a)～(d)を含むスクリーニング方法によって取得され得る。
(a)　　pH中性域の条件で抗原結合ドメイン又は抗体のライブラリを抗原に接触させる工程、
(b)　前記工程(a)で抗原に結合した抗原結合ドメイン又は抗体を取得する工程、
(c)　前記工程(b)で取得した抗原結合ドメイン又は抗体をpH酸性域の条件に置く工程、および
(d)　前記工程(c)で抗原結合活性が、前記工程(b)で選択した基準より弱い抗原結合ドメイン又は抗体を単離する工程。
　なお、前記の工程は2回以上繰り返されてもよい。従って、本発明によって、上述のスクリーニング方法において、(a)～(c)あるいは(a)～(d)の工程を2回以上繰り返す工程をさらに含むスクリーニング方法によって取得されたpH酸性域の条件における抗原に対する結合活性がpH中性域の条件における抗原に対する結合活性より低い抗原結合ドメインまたは抗体が提供される。(a)～(c)あるいは(a)～(d)の工程が繰り返される回数は特に限定されないが、通常10回以内である。
　本発明のスクリーニング方法において、高水素イオン濃度条件または低pHすなわちpH酸性域における抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は、pHが4.0～6.5の間の抗原結合活性であれば特に限定されないが、好ましいpHとして、pHが4.5～6.6の間の抗原結合活性を挙げることができる。別の好ましいpHとして、pHが5.0～6.5の間の抗原結合活性、さらにpHが5.5～6.5の間の抗原結合活性を挙げることができる。より好ましいpHとして、生体内の早期エンドソーム内のpHが挙げられ、具体的にはpH5.8における抗原結合活性を挙げることができる。また、低水素イオン濃度条件または高pHすなわちpH中性域における抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は、pHが6.7～10の間の抗原結合活性であれば特に限定されないが、好ましいpHとしてpHが6.7～9.5の間の抗原結合活性を挙げることができる。別の好ましいpHとして、pHが7.0～9.5の間の抗原結合活性、さらにpHが7.0～8.0の間の抗原結合活性を挙げることができる。より好ましいpHとして、生体内の血漿中でのpHを挙げることができ、具体的にはpHが7.4における抗原結合活性を挙げることができる。
　抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は当業者に公知の方法により測定することが可能であり、イオン化カルシウム濃度以外の条件については当業者が適宜決定することが可能である。抗原結合ドメイン又は抗体の抗原結合活性は、KD（Dissociation　constant：解離定数）、見かけのKD（Apparent　dissociation　constant：見かけの解離定数）、解離速度であるkd（Dissociation　rate：解離速度定数）、又は見かけのkd(Apparent　dissociation：見かけの解離速度定数)等として評価することが可能である。これらは当業者公知の方法で測定することが可能であり、例えばBiacore　(GE　healthcare)、スキャッチャードプロット、FACS等を用いることが可能である。
　本発明において、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原結合活性が高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原結合活性より高い抗原結合ドメイン又は抗体を選択する工程は、高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原結合活性が低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原結合活性より低い抗原結合ドメイン又は抗体を選択する工程と同じ意味である。
　低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原結合活性が高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原結合活性より高い限り、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原結合活性と高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原結合活性の差は特に限定されないが、好ましくは低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原結合活性が高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原結合活性の2倍以上であり、さらに好ましくは10倍以上であり、より好ましくは40倍以上である。
　前記のスクリーニング方法によりスクリーニングされる本発明の抗原結合ドメイン又は抗体はいかなる抗原結合ドメイン又は抗体でもよく、例えば上述の抗原結合ドメイン又は抗体をスクリーニングすることが可能である。例えば、天然の配列を有する抗原結合ドメイン又は抗体をスクリーニングしてもよいし、アミノ酸配列が置換された抗原結合ドメイン又は抗体をスクリーニングしてもよい。
　前記のスクリーニング方法によってスクリーニングされる本発明の抗原結合ドメイン又は抗体はどのように調製されてもよく、例えば、あらかじめ存在している抗体、あらかじめ存在しているライブラリ（ファージライブラリ等）、動物への免疫から得られたハイブリドーマや免疫動物からのB細胞から作製された抗体又はライブラリ、これらの抗体やライブラリに側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸変異を導入した抗体又はライブラリ（側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）又は非天然アミノ酸の含有率を高くしたライブラリや特定箇所に側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）又は非天然アミノ酸変異を導入したライブラリ等）などを用いることが可能である。
　動物への免疫から得られたハイブリドーマや免疫動物からのB細胞から作製された抗原結合ドメインまたは抗体から、低水素イオン濃度または高pHすなわちpH中性域の条件における抗原結合活性が高水素イオン濃度または低pHすなわちpH酸性域の条件における抗原結合活性より高い抗原結合ドメイン又は抗体を取得する方法として、例えば、WO2009/125825で記載されるような抗原結合ドメインまたは抗体中のアミノ酸の少なくとも一つが、側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸変異に置換されているもしくは抗原結合ドメインまたは抗体中に、側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸が挿入されている抗原結合分子または抗体が好適に挙げられる。
　側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異が導入される位置は特に限定されず、置換または挿入前と比較してpH酸性域における抗原結合活性がpH中性域における抗原結合活性より弱くなる（KD(pH酸性域)／KD(pH中性域)の値が大きくなる、又はkd(pH酸性域)／kd(pH中性域)の値が大きくなる）限り、如何なる部位でもよい。例えば、抗原結合分子が抗体の場合には、抗体の可変領域やCDRなどが好適に挙げられる。側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸に置換されるアミノ酸の数、又は挿入されるアミノ酸の数は当業者が適宜決定することができ、側鎖のpKaが4.0-8.0である１つのアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸によって置換され得るし、側鎖のpKaが4.0-8.0である１つのアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸が挿入され得るし、側鎖のpKaが4.0-8.0である2つ以上の複数のアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸によって置換され得るし、側鎖のpKaが4.0-8.0である2つ以上のアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸が挿入され得る。又、側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸への置換又は側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の挿入以外に、他のアミノ酸の欠失、付加、挿入および／または置換などが同時に行われ得る。側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸への置換又は側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の挿入は、当業者の公知のアラニンscanningのアラニンをヒスチジン等に置き換えたヒスチジン等scanning等の方法によってランダムに行われ得るし、側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の置換または挿入の変異がランダムに導入された抗原結合ドメインまたは抗体の中から、変異前と比較してKD(pH酸性域)／KD(pH中性域)又はkd(pH酸性域)／kd(pH中性域)の値が大きくなった抗原結合分子が選択され得る。
　前記のようにその側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸への変異が行われ、かつpH酸性域での抗原結合活性がpH中性域での抗原結合活性よりも低い抗原結合分子の好ましい例として、例えば、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸への変異後のpH中性域での抗原結合活性が、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸への変異前のpH中性域での抗原結合活性と同等である抗原結合分子が好適に挙げられる。本発明において、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異後の抗原結合分子が、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異前の抗原結合分子と同等の抗原結合活性を有するとは、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異前の抗原結合分子の抗原結合活性を100％とした場合に、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異後の抗原結合分子の抗原結合活性が少なくとも10％以上、好ましくは50％以上、さらに好ましくは80％以上、より好ましくは90%以上であることをいう。その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異後のpH7.4での抗原結合活性が、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異前のpH7.4での抗原結合活性より高くなってもよい。その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸への置換または挿入により抗原結合分子の抗原結合活性が低くなった場合には、抗原結合分子中の１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入などによって、抗原結合活性が、その側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の置換又は挿入前の抗原結合活性と同等にされ得る。本発明においては、そのような側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の置換又は挿入後に１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入を行うことによって結合活性が同等となった抗原結合分子も含まれる。
　さらに、抗原結合分子が抗体定常領域を含む物質である場合、pH酸性域での抗原結合活性がpH中性域での抗原結合活性よりも低い抗原結合分子の好ましい他の態様として、抗原結合分子に含まれる抗体定常領域が改変された方法を挙げることができる。改変後の抗体定常領域の具体例としては、例えば配列番号：９、１０、１１、または１２に記載の定常領域が好適に挙げられる。
（４）水素イオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合ドメインの結合活性を変化させるアミノ酸
　前記のスクリーニング方法によってスクリーニングされる本発明の抗原結合ドメイン又は抗体はどのように調製されてもよく、例えば、イオン濃度の条件が水素イオン濃度の条件もしくはpHの条件である場合には、あらかじめ存在している抗体、あらかじめ存在しているライブラリ（ファージライブラリ等）、動物への免疫から得られたハイブリドーマや免疫動物からのB細胞から作製された抗体又はライブラリ、これらの抗体やライブラリに側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異を導入した抗体又はライブラリ（側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の含有率を高くしたライブラリや特定箇所に側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸（例えばヒスチジンやグルタミン酸）や非天然アミノ酸の変異を導入したライブラリ等）などを用いることが可能である。こうした電子供与性を有するアミノ酸としては、ヒスチジンまたはグルタミン酸等の天然のアミノ酸のほか、ヒスチジンアナログ（US20090035836）もしくはm-NO2-Tyr（pKa　7.45）、3,5-Br2-Tyr（pKa　7.21）または3,5-I2-Tyr（pKa　7.38）等の非天然のアミノ酸（Bioorg.　Med.　Chem.　(2003)　11　(17),　3761-2768が好適に例示される。非天然アミノ酸は人為的にpKaをコントロールすることができることが知られている（Angew.　Chem.　Int.　Ed.　(2005)　44,　34、Chem　Soc　Rev.　(2004)　33　(7),　422-４30、Amino　Acids.　(1999)　16　(3-4),　345-379）。
　本発明の非限定の一つの態様として、「水素イオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性を変化させる少なくとも一つのアミノ酸残基」が導入された軽鎖可変領域とランダム化可変領域配列ライブラリとして作製された重鎖可変領域とを組み合わせることによっても、本発明の複数の互いに配列の異なる抗原結合分子を含むライブラリが作製され得る。
　当該アミノ酸残基の非限定な例として軽鎖のCDR1に含まれるアミノ酸残基が例示される。ほかにも、当該アミノ酸残基の非限定な例として軽鎖のCDR2に含まれるアミノ酸残基が例示される。また、当該アミノ酸残基の非限定な別の例として軽鎖のCDR3に含まれるアミノ酸残基もまた例示される。
　前記のように、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR1に含まれるアミノ酸残基の非限定な例として、軽鎖可変領域のCDR1中のKabatナンバリングで表される24位、27位、28位、31位、32位および/または34位のアミノ酸残基が挙げられる。また、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR2に含まれるアミノ酸残基の非限定な例として、軽鎖可変領域のCDR2中のKabatナンバリングで表される50位、51位、52位、53位、54位、55位および/または56位のアミノ酸残基が挙げられる。さらに、当該アミノ酸残基が軽鎖のCDR3に含まれアミノ酸残基の非限定な例として、軽鎖可変領域のCDR3中のKabatナンバリングで表される89位、90位、91位、92位、93位、94位および/または95A位のアミノ酸残基が挙げられる。また、これらのアミノ酸残基が、水素イオン濃度の条件によって抗原に対する抗原結合分子の結合活性が変化する限り、これらのアミノ酸残基が単独で含まれ得るし、これらのアミノ酸が二つ以上組み合わされて含まれ得る。
　本発明においてヒスチジン又は非天然アミノ酸に置換される個所の非限定な例として、例えば下記で示されるWO2009/125825に記載の個所が挙げられ得る。なお、アミノ酸位置はKabatナンバリングで示されている。
　重鎖：H27、H31、H32、H33、H35、H50、H58、H59、H61、H62、H63、H64、H65、H99、H100b、H102
　軽鎖：L24、L27、L28、L32、L53、L54、L56、L90、L92、L94
　これらの改変個所のうち、H32、H61、L53、L90、L94は普遍性の高い改変個所と考えられるが、これに特定されるものではなく目的に応じて適宜設計され得る。
　また特に限定されないが、抗原がIL-6受容体（例えば、ヒトIL-6受容体）の場合の好ましい改変個所として以下の箇所を挙げることができる。
　重鎖：H27、H31、H32、H35、H50、H58、H61、H62、H63、H64、H65、H100b、H102
　軽鎖：L24、L27、L28、L32、L53、L56、L90、L92、L94
　複数の個所を組み合わせてヒスチジン又は非天然アミノ酸に置換する場合の好ましい組合せの具体例としては、例えば、H27、H31、H35の組合せ、H27、H31、H32、H35、H58、H62、H102の組合せ、L32、L53の組合せ、L28、L32、L53の組合せ等が挙げられ得る。さらに、重鎖と軽鎖の置換個所の好ましい組み合わせの例としては、H27、H31、L32、L53の組合せが挙げられ得る。これらの個所は、１つの個所のみヒスチジン又は非天然アミノ酸で置換され得るし、複数の箇所がヒスチジン又は非天然アミノ酸で置換され得る。
　また、抗原結合分子が、抗体定常領域を含む物質である場合、イオン濃度の条件によって抗原結合分子の抗原に対する結合を変化させる他の方法として、当該抗体定常領域中のアミノ酸を改変する方法も挙げられ得る。このような抗体定常領域の具体例としては、例えば、WO2009/125825の実施例に記載の抗体定常領域（配列番号：１３、配列番号：１４、配列番号：１５、配列番号：１６）に置換する方法が挙げられ得る。また、抗体定常領域の改変方法としては、例えば、定常領域のアイソタイプ（IgG1、IgG2、IgG3、IgG4）を複数検討し、pH酸性域における抗原結合活性が低下する（pH酸性域における解離速度が速くなる）アイソタイプを選択する方法が挙げられる。さらに野生型アイソタイプのアミノ酸配列（野生型IgG1、IgG2、IgG3、IgG4アミノ酸配列）にアミノ酸置換を導入することで、pH酸性域における抗原結合活性を低下させる（pH酸性域における解離速度が速くする）方法が挙げられる。アイソタイプ（IgG1、IgG2、IgG3、IgG4）によって抗体定常領域のヒンジ領域の配列が大きく異なり、ヒンジ領域のアミノ酸配列の違いは抗原結合活性に大きく影響を与えるため、抗原やエピトープの種類によって適切なアイソタイプを選択することで、イオン濃度の条件、例えばpH酸性域における抗原結合活性が低下する（pH酸性域における解離速度が速くする）アイソタイプが選択され得る。また、ヒンジ領域のアミノ酸配列の違いは抗原結合活性に大きく影響を与えることから、野生型アイソタイプのアミノ酸配列のアミノ酸置換個所としては、ヒンジ領域が望ましいと考えられる。
　イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合分子は、上述の方法を用いることによって、このような性質を有さない抗原結合分子にアミノ酸の置換や挿入を実施することによって作製することが可能であるが、それ以外の方法として、このような性質を有する抗原結合分子を直接取得する方法が挙げられる。例えば、動物（マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ヒト免疫グロブリントランスジェニックマウス、ヒト免疫グロブリントランスジェニックラット、ヒト免疫グロブリントランスジェニックウサギ、ラマ、ラクダ等）へ抗原を免疫して得られた抗体をイオン濃度依存的な抗原に対する結合を指標にスクリーニングを行うことによって、目的の性質を有する抗体が直接取得され得るし、また、in　vitroで提示した抗体ライブラリーからイオン濃度依存的な抗原に対する結合を指標にスクリーニングを行い、目的の性質を有する抗体が直接取得され得るし、特に方法は限定されない。
アミノ酸の改変
　抗原結合ドメインのアミノ酸の改変のためには、部位特異的変異誘発法（Kunkelら（Proc.　Natl.　Acad.　Sci.　USA　(1985)　82,　488-492））やOverlap　extension　PCR等の公知の方法が適宜採用され得る。また、天然のアミノ酸以外のアミノ酸に置換するアミノ酸の改変方法として、複数の公知の方法もまた採用され得る（Annu.　Rev.　Biophys.　Biomol.　Struct.　(2006)　35,　225-249、Proc.　Natl.　Acad.　Sci.　U.S.A.　(2003)　100　(11),　6353-6357）。例えば、終止コドンの１つであるUAGコドン（アンバーコドン）の相補的アンバーサプレッサーtRNAに非天然アミノ酸が結合されたtRNAが含まれる無細胞翻訳系システム（Clover　Direct（Protein　Express））等も好適に用いられる。
中和活性
　本発明の非限定の一態様では、FcRn結合ドメイン、抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化する抗原結合ドメイン、および糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化するひとつ以上の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子を含む医薬組成物が提供される。一般的に、中和活性とは、ウイルスや毒素など、細胞に対して生物学的活性を有するリガンドの当該生物学的活性を阻害する活性をいう。即ち、中和活性を有する物質とは、当該リガンド又は当該リガンドが結合するレセプターに結合し、当該リガンドとレセプターの結合を阻害する物質をさす。中和活性によりリガンドとの結合を阻止されたレセプターは、当該レセプターを通じた生物学的活性を発揮することができなくなる。抗原結合分子が抗体である場合、このような中和活性を有する抗体は一般に中和抗体と呼ばれる。ある被検物質の中和活性は、リガンドの存在下における生物学的活性をその被検物質の存在又は非存在下の条件の間で比較することにより測定され得る。
　例えば、IL-6Rの主要なリガンドとして考えられているものは配列番号：１７で表されるIL-6が好適に挙げられる。そのアミノ末端が細胞外ドメインを形成するI型膜タンパク質であるIL-6Rは、IL-6によってニ量体化が誘導されたgp130レセプターとともにヘテロ四量体を形成する（HEINRICHら（Biochem.　J.　(1998)　334,　297-314））。当該ヘテロ四量体の形成によって、gp130レセプターに会合しているJakが活性化される。Jakは自己リン酸化とレセプターのリン酸化を行う。受容体及びJakのリン酸化部位は、Stat3のようなSH2を持つStatファミリーに属する分子や、MAPキナーゼ、PI3/Akt、そのほかのSH2を持つタンパク質やアダプターに対して、結合部位の役割を果たす。次に、gp130レセプターに結合したStatが、Jakによってリン酸化。リン酸化されたStatは二量体を形成して核内に移行し、標的遺伝子の転写を調節する。JakまたはStatは他のクラスのレセプターを介してシグナルカスケードに関与することもできる。脱制御されたIL-6のシグナルカスケードは、自己免疫疾患の病態や炎症、多発性骨髄腫や前立腺癌などの癌で観察される。癌遺伝子として作用し得るStat3は、多くの癌において恒常的に活性化している。前立腺癌と多発性骨髄腫では、IL-6Rからのシグナルカスケードと、上皮成長因子受容体　(EGFR)　ファミリーメンバーからのシグナルカスケードとの間にクロストークがある（Ishikawaら（J.　Clin.　Exp.　Hematopathol.　(2006)　46　(2),　55-66））。
　こうした細胞内のシグナルカスケードは細胞種毎に異なるため、目的とする標的細胞毎に適宜標的分子を設定することができ、上記の因子に限定されるものではない。生体内シグナルの活性化を測定することにより、中和活性を評価することができる。また、生体内シグナルカスケードの下流に存在する標的遺伝子に対する転写誘導作用を指標として、生体内シグナルの活性化を検出することもできる。標的遺伝子の転写活性の変化は、レポーターアッセイの原理によって検出することができる。具体的には、標的遺伝子の転写因子又はプロモーター領域の下流にGFP（Green　Fluorescence　Protein）やルシフェラーゼなどのレポーター遺伝子を配し、そのレポーター活性を測定することにより、転写活性の変化をレポーター活性として測定することができる。生体内シグナルの活性化の測定キットは市販のものを適宜使用することができる（例えば、Mercury　Pathway　Profiling　Luciferase　System（Clontech）等）。
　更に、通常は細胞増殖を促進する方向に働くシグナルカスケードに作用するEGFレセプターファミリー等のレセプターリガンドの中和活性を測定する方法として、標的とする細胞の増殖活性を測定することによって、中和抗体の中和活性を評価することができる。例えば、例えばHB-EGF等その増殖がEGFファミリーの成長因子によって促進される細胞の増殖に対する、抗HB-EGF抗体の中和活性に基づく抑制効果を評価又は測定する方法として、以下の方法が好適に使用される。試験管内において該細胞増殖抑制活性を評価又は測定する方法としては、培地中に添加した[3H]ラベルしたチミジンの生細胞による取り込みをDNA複製能力の指標として測定する方法が用いられる。より簡便な方法としてトリパンブルー等の色素を細胞外に排除する能力を顕微鏡下で計測する色素排除法や、MTT法が用いられる。後者は、生細胞がテトラゾリウム塩であるMTT（3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl）-2,5-diphenyl　tetrazolium　bromide)を青色のホルマザン産物へ転換する能力を有することを利用している。より具体的には、被検細胞の培養液にリガンドと共に被検抗体を添加して一定時間を経過した後に、MTT溶液を培養液に加えて一定時間静置することによりMTTを細胞に取り込ませる。その結果、黄色の化合物であるMTTが細胞内のミトコンドリア内のコハク酸脱水素酵素により青色の化合物に変換される。この青色生成物を溶解し呈色させた後にその吸光度を測定することにより生細胞数の指標とするものである。MTT以外に、MTS、XTT、WST－1、WST－8等の試薬も市販されており（nacalai　tesqueなど）好適に使用することができる。活性の測定に際しては、対照抗体として抗HB-EGF抗体と同一のアイソタイプを有する抗体で該細胞増殖抑制活性を有しない結合抗体を、抗HB-EGF抗体と同様に使用して、抗HB-EGF抗体が対照抗体よりも強い細胞増殖抑制活性を示すことにより活性を判定することができる。
　活性を評価するための細胞として、例えば、その増殖がHB-EGFによって促進される細胞である、卵巣癌細胞であるRMG-1細胞株や、ヒトEGFRの細胞外ドメインとマウスGCSF受容体の細胞内ドメインをインフレームで融合した融合タンパク質であるhEGFR/mG-CSFRをコードする遺伝子を発現する様に結合したベクターによって形質転換されたマウスBa/F3細胞等も好適に使用され得る。このように、当業者は、活性を評価するための細胞を適宜選択することによって前記の細胞増殖活性の測定に使用することが可能である。
　本発明が提供する抗原結合分子は、抗原を血漿中から消失させることができるため、抗原結合分子自体が中和活性を有することは必ずしも必要ではない。しかしながら、Fcγレセプターを介したエンドサイトーシスにより抗原が抗原結合分子とともにFcγレセプターを発現する細胞内に取り込まれるまでの間、抗原に対する中和活性を発揮することによって、血漿中に存在する抗原の機能を遮断することがさらに好ましい。
　また、本発明が提供する抗原結合分子は、細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離を促進することができるため、細胞内で抗原結合分子から解離した抗原はライソソームにおいて分解される。よって、抗原結合分子自体が中和活性を有することは必ずしも必要ではない。しかしながら、糖鎖受容体を介したエンドサイトーシスにより抗原が抗原結合分子とともに糖鎖受容体を発現する細胞内に取り込まれるまでの間、抗原に対する中和活性を発揮することによって、血漿中に存在する抗原の機能を遮断することがさらに好ましい。
　さらに、本発明が提供する抗原結合分子は、血漿中の総抗原濃度または遊離抗原濃度を減少させることができるため、抗原結合分子自体が中和活性を有することは必ずしも必要ではない。しかしながら、糖鎖受容体を介したエンドサイトーシスにより抗原が抗原結合分子とともに糖鎖受容体を発現する細胞内に取り込まれるまでの間、抗原に対する中和活性を発揮することによって、血漿中に存在する抗原の機能を遮断することがさらに好ましい。
糖鎖受容体
　糖鎖とは、各種の糖がグリコシド結合によって連結された一群の化合物をいう。生体内の糖鎖の多くはタンパク質や脂質と結合した複合分子として存在しており、複合糖質の名で総称される。そのうち糖とタンパク質が結合した複合糖質は糖タンパク質である。
　本発明において用いられる糖鎖受容体結合ドメインが結合する糖鎖受容体が認識する糖鎖の例としては、糖タンパク質を構成する糖鎖が挙げられる。糖タンパク質の糖鎖の例としてはO結合型糖鎖とN結合型糖鎖とが挙げられる。より好適には、糖タンパク質の糖鎖の例としてはN結合型糖鎖が挙げられる。
　糖タンパク質のO結合型糖鎖はタンパク質のセリン又はスレオニン残基の水酸基とO-グリコシド結合する。セリン又はスレオニン残基に直接結合する糖はN-アセチルガラクトサミン（GalNAc）であることが多く、そのコア構造は（１）N-アセチルガラクトサミン（GalNAc）とβ1-3結合により結合したガラクトース（Gal）、（２）GalNAcとβ1-3結合により結合したGal及びβ1-6結合により結合したN-アセチルグルコサミン（GlcNAc）、（３）GalNAcとβ1-3結合により結合したGlcNAc、（４）GalNAcとβ1-3結合により結合したGlcNAc及びβ1-6結合により結合したGlcNAc、（５）GalNAcとβ1-6結合により結合したGlcNAc、（６）GalNAcとβ1-6結合により結合したGalNAc、（７）GalNAcとβ1-3結合により結合したGal、の８つから構成される。
　糖タンパク質のN結合型糖鎖は全て共通母核構造としてMan　6（Manα1-3）Manβ1-4GlcNAcβ1-4GlcNAcを持ち、これはトリマンノシルコアと呼ばれる。トリマンノシルコアに付加した糖残基の構造と部位に基づいて、N-結合型糖鎖は3つのサブグループに分類される。
　このうち複合型糖鎖はトリマンノシルコア以外にはマンノース残基を含まない。側鎖部分の還元末端にはGlcNAc残基が存在し、トリマンノシルコアの2つのα-マンノシル残基と結合している。
　高マンノース型糖鎖はトリマンノシルコアに加え、α-マンノース残基のみを含む。このグループの糖鎖にはManα1-6（Manα1-3）Manα1-6（Manα1-3）Manβ1-4GlcNAcβ1-4GlcNAcという七糖が共通の母核として含まれている。
　複合型糖鎖は1つあるいは2つのα-マンノシル基が、高マンノース型の場合と同様にトリマンノシルコアのManα1-6腕と結合し、複合型糖鎖の側鎖と同じものがコアのManα1-3腕に結合している。トリマンノシルコアの還元末端に位置するGlcNAcのC-6位へのフコースの結合の有無、またβマンノシル残基のC-4位へのβ-GlcNAcの結合（バィセクテイングGlcNAcと呼ばれる）の有無は、複合型糖鎖の構造の多様性に寄与している。3つのN-結合型糖鎖サブグループの間で、複合型が最も多様な構造を含んでいる。
　糖鎖受容体は上記の糖鎖を認識して結合する受容体をいう。その認識する糖鎖に結合する限りいかなる分子も糖鎖受容体として利用され得るが、好ましい受容体は細胞上に発現する受容体である。例えば、CD99上のO結合型糖鎖が、PILR（paired　Ig様２型受容体）による結合に重要な役割を演じていることが示されている（The　Journal　of　immunology　(2008)　vol.180　(3),　1686-1693）。また、その末端がガラクトースであるN結合型糖鎖に対して、アシアログリコプロテインレセプターが結合することが知られている。さらに、その末端がマンノースであるN結合型糖鎖に対して、マンノースレセプターが結合することが知られている。こうした受容体は糖鎖受容体として本発明において好適に利用される。すなわち、本発明における抗原結合分子はこうした受容体に結合するドメイン（糖鎖受容体結合ドメイン）を有する。よって、糖鎖受容体がアシアログリコプロテインレセプターである場合には、その末端がガラクトースであるN結合型糖鎖が、本発明における抗原結合分子が含む糖鎖受容体結合ドメインとして好適に使用され得る。また、糖鎖受容体がマンノースレセプターである場合には、その末端がマンノースであるN結合型糖鎖が、本発明における抗原結合分子が含む糖鎖受容体結合ドメインとして好適に使用され得る。
糖鎖受容体結合ドメイン
　本発明の抗原結合分子は、糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する一またはそれ以上の結合ドメインを有する。糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ドメインは、抗原結合分子がpH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性より低ければ特にその種類や数は限定されない。また、直接または間接的に糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対して結合活性を有するドメインが使用され得る。そのようなドメインとしては、例えば、直接的に糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有する糖鎖；IgG型免疫グロブリンのFcドメイン；糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する抗体；抗糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ペプチド；糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対するScaffold分子等が例示され得る。本発明においては、pH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性より低い糖鎖受容体結合ドメインが好ましい。当該ドメインは、あらかじめpH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有しpH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性より低い糖鎖受容体結合ドメインであればそのまま用いられ得る。その末端がガラクトースであるN結合型糖鎖を有する糖鎖受容体結合ドメインと当該糖鎖に結合する糖鎖受容体であるアシアログリコプロテインレセプターとのpH酸性域における結合活性は、pH中性域における結合活性よりも低い例として好適に挙げられる。また、その末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する糖鎖受容体結合ドメインと当該糖鎖に結合する糖鎖受容体であるマンノースレセプターとのpH酸性域における結合活性も、pH中性域における結合活性よりも低い例として好適に挙げられる。
　pH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する糖鎖受容体結合ドメインの結合活性がない若しくは弱い場合には、抗原結合分子中のアミノ酸を改変することによって、糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性が獲得され得る。また、あらかじめpH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有しているドメイン中のアミノ酸を改変することによって、糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性が増強され得る。糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ドメインのアミノ酸改変は、アミノ酸改変前と改変後のpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を比較することによって目的の改変が見出され得る。
　糖鎖受容体結合ドメインのpH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性より低くない場合には、抗原結合分子中のアミノ酸を改変することによって、pH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性より低くなるような結合活性が獲得され得る。糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ドメインのアミノ酸改変は、アミノ酸改変前と改変後のpH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性と中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を比較することによって目的の改変が見出され得る。
　本発明において、糖鎖受容体結合ドメインは抗原結合分子を構成する抗原結合ドメインやFcRn結合ドメイン以外の部位にも導入され得る。また、抗原結合ドメインによる抗原への結合を阻害しない限り、糖鎖受容体結合ドメインは抗原結合分子の構造のいかなる部位にも導入され得る。当該部位は、抗原結合ドメインによる抗原への結合を阻害しない限り抗原結合ドメイン内にも導入され得るし、それ以外の部位にも導入され得る。また、別の態様では、糖鎖受容体結合ドメインは抗原結合分子のFcRn結合ドメインとFcRn特にヒトFcRnとの結合を阻害しない限り、抗原結合分子の構造のいかなる部位にも導入され得る。例えば、IgA抗体のヒンジ部は、O結合型糖鎖を結合するための糖鎖受容体結合ドメインのアミノ酸配列の候補となり得るし、XがPro以外のアミノ酸であるAsn-X-Ser/ThrというN結合型糖鎖を付加するモチーフ配列は、N結合型糖鎖を結合するための糖鎖受容体結合ドメインのアミノ酸配列の候補となり得る。こうしたアミノ酸配列を含む抗原結合分子をコードする遺伝子が導入された、後述するような宿主細胞の培養液から所望の糖鎖が結合される糖鎖受容体結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子が産生され得る。
　また本発明において、糖鎖受容体結合ドメインは化学的に作成されてもよい。例えば、ガラクトース末端を有するN型糖鎖を模倣したガラクトース誘導体やハイマンノース型糖鎖を模倣したマンノース誘導体、シアル酸を模倣したような誘導体等の化学リガンドを共有結合的に抗原結合分子にコンジュゲートしてもよい。そのような化学リガンドとして、Bioorg.　Med.　Chem.　(2011)　19　(8),　2494-2500、Bioorg.　Med.　Chem.　(2009)　17　(20),　7254-7264、Bioorg.　Med.　Chem.　(2008)　16　(9),　5216-5231、J.　Am.　Chem.　Soc.　(2004)　126　(33),　10355-10363、J.　Pept.　Sci.　(2003)　9　(6),　375-385、Methods　Enzymol.　(2010)　478,　343-363等に記載されているような分子が挙げられるがこれに限定されない。コンジュゲートされる抗原結合部位のアミノ酸としてはリジンやシステインが挙げられるが、これに限定しない。抗原結合分子の特定個所にコンジュゲートする方法としては、コンジュゲート部位のアミノ酸をシステインに置換する、あるいは、コンジュゲートを望まない部位のリジンを他のアミノ酸に置換する等の当業者公知の方法を取ることができる。コンジュゲートする方法としては、マレイイミドとシステインのチオールを反応させる方法や活性化エステルとリジンを反応させる方法等当業者公知の方法を用いることができる。
　抗原やFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を測定する際のpH以外の条件は当業者によって適宜選択され得るため、特定の方法に限定されない。例えば、WO2009/125825に記載されるようにMESバッファー、37℃の条件において測定され得る。また、抗原結合分子の抗原結合活性およびFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性の測定は、当業者にとって公知の方法によって実施され得る。例えば、Biacore（GE　Healthcare）などを用いて測定することが可能である。抗原が可溶型抗原である場合は、抗原結合分子と抗原の結合活性の測定は、抗原結合分子を固定化したチップへ、抗原をアナライトとして流すことによって可溶型抗原への結合活性を評価することが可能であり、抗原が膜型抗原である場合は、抗原を固定化したチップへ、抗原結合分子をアナライトとして流すことで膜型抗原への結合活性を評価することが可能である。抗原結合分子とFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性の測定は、抗原結合分子またはFcRn特にヒトFcRnを固定化したチップへ、それぞれFcRn特にヒトFcRnまたは抗原結合分子をアナライトとして流すことによって評価され得る。
　本発明において、pH酸性域におけるFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性とは、pH4.0～pH6.5でのFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を意味する。pH酸性域におけるFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性とは、好ましくはpH5.5～pH6.5での任意のpH、たとえば、pH5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.2、6.3、6.4、および6.5から選択されるpHにおける抗原に対する結合活性を意味し、特に好ましくは、生体内の早期エンドソーム内のpHに近いpH5.8～pH6.0での任意のpH、たとえば、pH5.80、5.81、5.82、5.83、5.84、5.85、5.86、5.87、5.88、5.89、5.90、5.91、5.92、5.93、5.94、5.95、5.96、5.97、5.98、5.99、および6.00から選択されるpHにおける抗原結合活性を意味する。
　結合活性の測定に際して用いられる温度として、10℃から50℃までのいずれの温度においても、FcRn結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子とFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性が評価され得る。好ましくは、FcRn結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子とFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を測定するために15℃から40℃までのいずれの温度も用いられ得る。より好ましくは、FcRn結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子とFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を測定するために、例えば20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、および35℃のいずれかのような20℃から35℃までのいずれの温度も用いられ得る。
　本発明において、抗原結合ドメインによる抗原に対する結合を阻害しないとは、糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子の抗原結合活性が、糖鎖受容体結合ドメインの導入前の抗原結合分子が有する抗原結合活性の20％以上、好ましくは50％以上、さらに好ましくは80％以上、より好ましくは90%以上を維持していることをいう。糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子の抗原結合活性が低くなった場合には、抗原結合分子中の１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入などによって、糖鎖受容体結合ドメインの導入前の抗原結合活性と同等に変化させ得る。本発明においては、そのような糖鎖受容体結合ドメインの導入後に１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入を行うことによって、結合活性が同等となった抗原結合分子も含まれる。また、糖鎖受容体結合ドメインによるFcRn特にヒトFcRnに対する結合を阻害しないとは、糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子のFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性が、糖鎖受容体結合ドメインの導入前の抗原結合分子が有するFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性の20％以上、好ましくは50％以上、さらに好ましくは80％以上、より好ましくは90%以上を維持していることをいう。糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子のFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性が低くなった場合には、抗原結合分子中の１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入などによって、糖鎖受容体結合ドメインの導入前のFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性と同等に変化させ得る。本発明においては、そのような糖鎖受容体結合ドメインの導入後に１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入を行うことによって、結合活性が同等となった抗原結合分子も含まれる。抗原またはFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性の測定方法および決定方法は後述される。
糖鎖
　本発明における抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインの例として、所望の糖鎖が結合された糖鎖受容体結合ドメインが好適に挙げられる。所望の糖鎖としてはO結合型糖鎖またはN結合型糖鎖が好適に挙げられるが、糖鎖受容体結合ドメインに糖鎖を結合する方法は公知の方法が採用され得る。たとえば、タンパク質分泌能を有する不死化哺乳動物細胞株の培養細胞から細胞抽出液を調製し、前記抽出液に抗体をコードするmRNAを添加することを特徴とする無細胞タンパク質合成系における翻訳後修飾された抗体の製造方法（特開2006-141241）等のような無細胞系の一連の酵素方法が、所望の糖鎖が結合された糖鎖受容体結合ドメインの製造方法に採用され得る。また、そのような公知の方法の一つとして、組換え遺伝子手法等によって所望の糖鎖を付加するモチーフ配列が導入された、天然または人工的に作製された抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインをコードする遺伝子を、宿主細胞に導入することによって、当該宿主細胞の培養液から所望の糖鎖が結合される糖鎖受容体結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子が産生され得る。
　糖鎖がO結合型糖鎖である場合、O結合型糖鎖を付加するモチーフ配列は公知のデータベース等を使用することによって、O結合型糖鎖の設計が可能であるだろう。IgA抗体のヒンジ部にはO結合型糖鎖が付加されており、こうした既に知られたO結合型糖鎖が付加された糖鎖受容体結合ドメインをコードする遺伝子配列等がモチーフ配列の候補となるであろう。糖鎖がN結合型糖鎖である場合、N結合型糖鎖を付加するモチーフ配列は、Asn-X-Ser/Thrという３つのアミノ酸が連続するモチーフであることが知られている。このため、組換え遺伝子手法等によってN結合型糖鎖を付加するモチーフ配列であるAsn-X-Ser/Thrをコードするように設計された糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子をコードする遺伝子を、後述するような宿主細胞に導入することによって、当該宿主細胞の培養液から所望の糖鎖が結合される糖鎖受容体結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子が産生され得る。
　上記のように産生された抗原結合分子の糖鎖構造は単一である場合もあるが、複数の糖鎖が連結された混合物として産生されることもある。本発明において、こうした混合物も好適に使用され得る。また、特定の糖鎖がその糖鎖結合ドメインに連結された抗原結合分子も本発明において好適に使用され得る。
　本発明における抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに特定の糖鎖を連結する方法として複数の公知の方法が採用され得る。そのような公知の方法の一つとして、天然または組換え遺伝子手法等によって人工的に作製された抗原結合分子が有する糖鎖の性質を利用することによって、特定の糖鎖を有する抗原結合分子を精製する方法が挙げられる。高マンノース型糖鎖を有する抗体がConA-sepharoseを用いたアフィニティクロマトグラフィを用いて精製されることが知られている（Millward（Biologicals　(2008)　36,　49-60））。こうした精製法は、本発明において非還元末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子を作製するために使用可能である。
　また、別の態様では、特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、酵素処理も適宜採用され得る。後に実施例で記載されるように、非還元末端がガラクトースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子が、非還元末端がシアル酸である複合型糖鎖を有する抗原結合分子からシアリダーゼ処理によって作製され得る。また、高マンノース型糖鎖を有する抗体がシアリダーゼおよびβガラクトシダーゼ処理によりガラクトースがその糖鎖から除去された形で作製されることが知られている（Newkirk（Clin.Exp.Immunol.　(1996)　106,　259-264））。こうしたシアリダーゼおよびβガラクトシダーゼ処理を含む作製法は、本発明において非還元末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子を作製するために使用可能である。
　異なる態様では、本発明の特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、当該抗原結合分子をコードする組換え遺伝子が形質導入された、特定の糖鎖が蓄積するように（遺伝的または組換え遺伝子手法を含みこれらに限定されない）そのグリコシダーゼ活性が変化した宿主細胞の培養液から回収する方法も適宜採用され得る。高マンノース型のN結合型糖鎖を有する抗体が、当該抗体をコードする組換え遺伝子が形質導入されたN-アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼI活性を欠失するCHO細胞由来のLec1変異株の培養液より回収されることが知られている（Wright　and　Morrison（J.Exp.Med.　(1994)　180,　1087-1096））。本発明において非還元末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子は、当該分子をコードする組換え遺伝子が形質導入されたLec1変異株の培養液から回収され得る。
　さらに別の態様では、本発明の特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、当該抗原結合分子を産生する細胞の培養に際して特定のグリコシダーゼ反応を阻害する阻害剤を添加することによって培養液に蓄積された特定の糖鎖を有する抗原結合分子を回収する方法も適宜採用され得る。フコースをその還元末端に有しない高マンノース型のN結合型糖鎖を有する抗体が、その抗体を産生するCHO細胞の培養に際してkifunesineを添加することによって当該細胞の培養液から回収されることが知られている（Zhou（Biotechnol.　Bioeng.　(2008)　99,　652-665））。本発明においてフコースをその還元末端に有せず、非還元末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子は、たとえば当該分子をコードする組換え遺伝子が形質導入されたCHO細胞を、kifunesineを添加して培養することによってその培養液から回収され得る。また、たとえば上述したグリコシダーゼ活性が変化した宿主細胞の培養に際してこうした阻害剤を添加する方法を組み合わせることによっても、本発明の特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得することが可能である。このような組合せによって特定の糖鎖を有する抗体を回収することが公知であり（Kandaら（Glycobiology　(2007)　17,　104-118））、本発明において特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、同様の組合せが適宜採用され得る。
　また、Pichia　pastoris等の宿主を遺伝的に改変することにより特定の糖鎖構造有するタンパク質を発現させる方法は知られており（Biochemistry.　2008　Sep　30;47(39):10294-304.、J　Biotechnol.　2009　Feb　23;139(4):318-25.、Nat　Biotechnol.　2006　Feb;24(2):210-5.）、このような方法を用いることで、特定の糖鎖構造（例えば、ガラクトース末端を有するN型糖鎖）を均一にN型糖鎖付加配列に結合させた抗原結合分子を作製することができる。
　本発明の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子、特にヒト由来の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子は、糖鎖受容体に対してpH依存的に結合し、且つ、あるいは、または、pH中性域において糖鎖受容体結合活性、特にヒト由来の糖鎖受容体結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性よりも低くすることが出来れば、抗原結合分子による抗原の細胞内への取込を促進させ、抗原結合分子の投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させ、抗原結合分子の薬物動態を向上させ、１つの抗原結合分子が結合可能な抗原の数を増加させることが可能である。
糖鎖受容体に対する結合活性
　本発明において、pH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性とは、pH4.0～pH6.5での糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を意味する。好ましくはpH5.5～pH6.5での任意のpH、たとえば、pH5.5、5.6、5.7、5.8、5.9、6.0、6.1、6.2、6.3、6.4、および6.5から選択されるpHにおける糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を意味し、特に好ましくは、生体内の早期エンドソーム内のpHに近いpH5.8～pH6.0での任意のpH、たとえば、pH5.80、5.81、5.82、5.83、5.84、5.85、5.86、5.87、5.88、5.89、5.90、5.91、5.92、5.93、5.94、5.95、5.96、5.97、5.98、5.99、および6.00から選択されるpHにおける糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を意味する。また、本発明において、pH中性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性とは、pH6.7～pH10.0での糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を意味する。好ましくは、pH7.0～pH8.0での任意のpH、たとえば、pH7.0、7.1、7.2、7.3、7.4、7.5、7.6、7.7、7.8、7.9、および8.0から選択されるpHにおける糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を意味し、特に好ましくは、生体内の血漿中のpHに近いpH7.4での糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を意味する。
　糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を測定する際のpH以外の条件は当業者によって適宜選択され得るため、特に特定の条件には限定されない。例えば、WO2009/125825に記載されるようにMESバッファー、37℃の条件において測定され得る。又、抗原結合分子の糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性の測定は当業者に公知の方法により実施され得る。例えば、Biacore（GE　Healthcare）などを用いて測定され得る。抗原結合分子と糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性の測定は、たとえば、糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体分子を固定化したチップへ、抗原結合分子をアナライトとして流すことによって、糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する抗原結合分子の結合活性を評価することが可能である。また、その反対に、抗原結合分子を固定化したチップへ、可溶化された糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体をアナライトとして流すことによって、糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性が評価され得る。
　本発明において、pH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性がpH中性域における抗原結合活性よりも弱い限り、pH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性とpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性の比は特に限定されない。好ましくは糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対するに対するpH5.8でのKD（Dissociation　constant：解離定数）とpH7.4でのKDの比であるKD　(pH5.8)／KD　(pH7.4)の値が２以上であり、さらに好ましくはKD　(pH5.8)／KD　(pH7.4)の値が１０以上であり、さらに好ましくはKD　(pH5.8)／KD　(pH7.4)の値が４０以上である。KD　(pH5.8)／KD　(pH7.4)の値の上限は特に限定されず、当業者の技術において作製可能な限り、400、1000、10000等、いかなる値でもよい。
　糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性の値として、KD（解離定数）が用いられ得る。KD（解離定数）は、当業者において公知の方法によって測定され得る。例えばBiacore（GE　healthcare）、スキャッチャードプロット、フローサイトメーター等が好適に用いられ得る。
　また本発明におけるpH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性とpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性の比を示す他の指標として、例えば、解離速度定数であるkd（Dissociation　rate　constant：解離速度定数）も好適に用いられ得る。結合活性の比を示す指標としてKD（解離定数）の代わりにkd（解離速度定数）を用いる場合、糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対するpH酸性域でのkd（解離速度定数）とpH中性域でのkd（解離速度定数）の比であるkd（pH酸性域）／kd（pH中性域）の値は、好ましくは２以上であり、さらに好ましくは５以上であり、さらに好ましくは１０以上であり、より好ましくは３０以上である。kd（pH酸性域）／kd（pH中性域）の値の上限は特に限定されず、当業者の技術常識において作製可能な限り、５０、１００、２００等、いかなる値にも設定され得る。
　例えば、糖鎖受容体の一つであるアシアログライコプロテインレセプターとガラクトースの相互作用はpH依存的であり、pH中性域で高い結合活性を示し、pH酸性域で低い結合活性を示すことが知られている（J　Biol　Chem　Vol.　274,　No.　50,　pp.　35400-35406,　1999）。同様に、糖鎖受容体の一つであるマンノースレセプターとマンノースの相互作用はpH依存的であり、pH中性域で高い結合活性を示し、pH酸性域で低い結合活性を示すことが知られている（J　Biol　Chem.　1994　Nov　11;269(45):28405-13.）。このことから、本発明において、糖鎖／糖鎖受容体としては、ガラクトース／アシアログライコプロテインレセプターおよびマンノース／マンノースレセプターは好適に用いられ得る。
　また、ガラクトース／アシアログライコプロテインレセプターおよびマンノース／マンノースレセプターの結合活性は、pH依存性だけでなく、カルシウムイオン濃度依存性も有する。糖鎖受容体の多くはCタイプレクチンであることから、糖鎖受容体と糖鎖の結合はカルシウムイオン濃度依存性を有する。すなわち、抗原結合分子と抗原の結合と同様に、糖鎖受容体と糖鎖の結合はカルシウムイオン濃度依存性であってもよく、高カルシウムイオン濃度における結合が、低カルシウムイオン濃度における結合よりも高ければよい。
　なお本発明において、異なるpHで抗原結合分子の糖鎖受容体、特にヒト由来の糖鎖受容体に対する結合活性を測定する際は、pH以外の条件は同一とすることが好ましい。
抗原結合分子
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対するひとつ以上の結合ドメインを有する抗原結合分子であって、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数が増加した抗原結合分子、および、pH酸性域における抗原に対する結合活性がpH中性域における抗原への結合活性よりも低い抗原結合ドメインをさらに含む当該抗原結合分子を提供する。また、本発明は前記の抗原結合分子の製造方法、当該抗原結合分子を含む医薬組成物を提供する。さらに、本発明は、当該抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞と生体内または生体外において接触させることを含む、当該抗原結合分子および／または当該抗原結合分子が結合する抗原を細胞内へ取り込む方法、一分子当りの当該抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法、細胞外に存在する抗原を減少させる方法、当該抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法、および、当該抗原結合分子からの抗原の解離を促進させる方法を提供する。また、本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを有する抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、生体内または生体外における当該抗原結合分子および／または当該抗原結合分子が結合する抗原の細胞内へ取込を促進するための方法、生体内または生体外における一分子当りの当該抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法、当該抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法、当該抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法、および、当該抗原結合分子からの抗原の解離を促進するための方法を提供する。
抗原結合分子の製造方法
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn特にヒトFcRn結合ドメインとひとつ以上の糖鎖受容体結合ドメインを有する抗原結合分子であって、pH中性域において糖鎖受容体に対する結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体とノ結合活性より低く、pH酸性域における抗原結合活性がpH中性域における抗原結合活性よりも低い抗原結合分子の製造方法を提供する。又、本発明は抗原結合分子の投与による血漿中の抗原濃度の減少に優れた促進作用を有するとともに薬物動態に優れた抗原結合分子の製造方法を提供する。さらに、本発明は医薬組成物として用いる際に特に有用である抗原結合分子の製造方法を提供する。
　具体的には、本発明は以下の工程を含む抗原結合分子の製造方法を提供する；
(a)　抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインを含む抗原結合分子のポリペプチド配列を提供する工程、
(b)　当該ポリペプチド配列中における糖鎖受容体結合ドメインのモチーフの候補となるアミノ酸配列を同定する工程、
(c)　(b)で同定されたアミノ酸配列と少なくとも１つのアミノ酸が異なるアミノ酸配列を含む糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを設計する工程、
(d)　(c)で設計された糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを含む抗原結合分子のポリペプチドをコードする遺伝子を作製する工程、
(e)　(d)で得られた遺伝子によって形質転換された宿主細胞の培養液から抗原結合分子を回収する工程。
　なお、(c)と(d)の工程は2回以上繰り返されてもよい。(c)と(d)の工程が繰り返される回数は特に限定されないが、通常10回以内である。また、後述されるように、(e)で得られた抗原結合分子に対してさらに酵素を用いて処理する工程も本発明の製造方法には含まれ得る。
　本発明が提供する製造方法によって製造される抗原結合分子に含まれる抗原結合ドメインは、前記「抗原結合ドメイン」に記載された方法によって提供され得る。
　また、本発明が提供する製造方法によって製造される抗原結合分子に含まれるFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を有するFcRn結合ドメインは、前記の「FcRn結合ドメイン」に記載された方法によって提供され得る。すなわち、FcRn結合ドメインがpH酸性域においてFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を有していれば特に限定されず、また、直接または間接的にFcRn特にヒトFcRnに対して結合活性を有するドメインが使用され得る。そのようなドメインとしては、例えば、直接的にFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性を有するIgG型免疫グロブリンのFc領域、アルブミン、アルブミンdomain3、抗ヒトFcRn抗体、抗ヒトFcRnペプチド、抗ヒトFcRn　Scaffold分子等、あるいは間接的にヒトFcRnに対する結合活性を有するIgGやアルブミンに結合する分子等が挙げられる。本発明においては、こうした直接または間接的にFcRn特にヒトFcRnに対して結合活性を有するドメインのポリペプチド配列が、抗原結合ドメインのポリペプチド配列として提供され得る。
　本発明が提供する製造方法によって製造される抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインの例として、所望の糖鎖が結合された糖鎖受容体結合ドメインが好適に挙げられる。所望の糖鎖としてはO結合型糖鎖またはN結合型糖鎖が好適に挙げられるが、糖鎖受容体結合ドメインに糖鎖を結合する方法は公知の方法が採用され得る。そのような公知の方法の一つとして、組換え遺伝子手法等によって所望の糖鎖を付加するモチーフ配列（すなわち、糖鎖受容体結合ドメインのモチーフ）が導入された、天然または人工的に作製された抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインをコードする遺伝子を、宿主細胞に導入することによって、当該宿主細胞の培養液から所望の糖鎖が結合される糖鎖受容体結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子が産生され得る。
　前記のように提供されたポリペプチド配列中において、糖鎖受容体結合ドメインのモチーフの候補となるアミノ酸配列を同定する工程として、例えば下記のような方法が使用され得る。O結合型糖鎖を付加するモチーフ配列は公知のデータベース等を使用することによって、同定され得る。また、抗体のヒンジ部分が本発明の抗原結合分子が含まれる場合に、当該ヒンジ部分が抗体のいずれのアイソタイプの抗体に由来するかが同定される得る。そのようなヒンジ部分はO型糖鎖受容体結合ドメインのモチーフの候補として同定され得る。また、糖鎖がN結合型糖鎖である場合、N結合型糖鎖を付加するモチーフ配列（すなわちN型糖鎖受容体結合ドメインのモチーフ）は、Asn-X-Ser/Thrという３つのアミノ酸が連続するモチーフであることが知られている。このため、組換え遺伝子手法等によってN結合型糖鎖受容体結合ドメインのモチーフであるAsn-X-Ser/Thrをコードするように設計された糖鎖受容体結合ドメインを設計する目的で、提供されたポリペプチド配列中におけるAsn-X-Ser/Thrと同一または類似する配列の有無が同定され得る。
　上記のように同定されたアミノ酸配列と少なくとも１つのアミノ酸が異なるアミノ酸配列を含む糖鎖受容体結合ドメインのモチーフが設計され得る。例えば、公知のデータベース等を使用することによって、上記で同定されたO結合型糖鎖を付加するモチーフ配列の候補となるポリペプチド配列中のアミノ酸を置換することによって。O結合型糖鎖モチーフ配列が設計され得る。また、抗体のヒンジ部分が本発明の抗原結合分子が含まれる場合に、当該ヒンジ部分がIgA抗体に由来するヒンジ部分を含んでいないときは、当該ヒンジ部分の配列をIgA抗体に由来するヒンジ部分の配列に置換することによってO結合型糖鎖モチーフ配列が設計され得る。一方、糖鎖がN結合型糖鎖である場合には、提供されたポリペプチド配列中におけるAsn-X-Ser/Thrと同一または類似する配列が同定されないときは、提供されたポリペプチド配列中の適切な個所にAsn-X-Ser/Thr配列を挿入することによって新たにN結合型糖鎖受容体結合ドメインのモチーフが付加され得る。また、提供されたポリペプチド配列中に見出されたAsn-X-Ser/Thr配列の類似配列のアミノ酸残基を置換することによってN結合型糖鎖受容体結合ドメインのモチーフであるAsn-X-Ser/Thr配列に当該類似配列が改変され得る。
　本発明の抗原結合分子は、糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対するひとつ以上の結合ドメインを有する。糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ドメインは、抗原結合分子がpH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性より低ければ特にその種類や数は限定されない。また、直接または間接的に糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対して結合活性を有するドメインが使用され得る。そのようなドメインとしては、例えば、直接的に糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有する糖鎖；IgG型免疫グロブリンのFcドメイン；糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する抗体；抗糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ペプチド；糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対するScaffold分子等が例示され得る。本発明においては、pH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性より低い糖鎖受容体結合ドメインが好ましい。当該ドメインは、あらかじめpH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有しpH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性より低い糖鎖受容体結合ドメインであればそのまま用いられ得る。末端がガラクトースであるN結合型糖鎖を有する糖鎖受容体結合ドメインと当該糖鎖に結合する糖鎖受容体であるアシアログリコプロテインレセプターとのpH酸性域における結合活性は、pH中性域における結合活性よりも低い例として好適に挙げられる。また、末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する糖鎖受容体結合ドメインと当該糖鎖に結合する糖鎖受容体であるマンノースレセプターとのpH酸性域における結合活性も、pH中性域における結合活性よりも低い例として好適に挙げられる。
　pH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する糖鎖受容体結合ドメインの結合活性がない若しくは弱い場合には、抗原結合分子中のアミノ酸を改変することによって、糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性が獲得され得る。また、あらかじめpH中性域において糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を有しているドメイン中のアミノ酸を改変することによって、糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性が増強され得る。糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ドメインのアミノ酸改変は、アミノ酸改変前と改変後のpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を比較することによって目的の改変が見出され得る。
　糖鎖受容体結合ドメインのpH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性より低くない場合には、抗原結合分子中のアミノ酸を改変することによって、pH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体との結合活性より低くなるような結合活性が獲得され得る。糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合ドメインのアミノ酸改変は、アミノ酸改変前と改変後のpH酸性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性と中性域における糖鎖受容体、特にヒト糖鎖受容体に対する結合活性を比較することによって目的の改変が見出され得る。
　本発明において、抗原結合ドメインによる抗原への結合を阻害しない限り、糖鎖受容体結合ドメインは抗原結合分子の構造のいかなる部位にも導入され得る。当該部位は、抗原結合ドメインによる抗原への結合を阻害しない限り抗原結合ドメイン内にも導入され得るし、それ以外の部位にも導入され得る。また、別の態様では、糖鎖受容体結合ドメインは抗原結合分子のFcRn結合ドメインとFcRn特にヒトFcRnとの結合を阻害しない限り、抗原結合分子の構造のいかなる部位にも導入され得る。例えば、IgA抗体のヒンジ部は、O結合型糖鎖を結合するための糖鎖受容体結合ドメインのアミノ酸配列の候補となり得るし、Asn-X-Ser/ThrというN結合型糖鎖を付加するモチーフ配列は、N結合型糖鎖を結合するための糖鎖受容体結合ドメインのアミノ酸配列の候補となり得る。こうしたアミノ酸配列を含む抗原結合分子をコードする遺伝子が導入された、後述するような宿主細胞の培養液から所望の糖鎖が結合される糖鎖受容体結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子が産生され得る。
　本発明において、抗原結合ドメインによる抗原に対する結合を阻害しないとは、糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子の抗原結合活性が、糖鎖受容体結合ドメインの導入前の抗原結合分子が有する抗原結合活性の20％以上、好ましくは50％以上、さらに好ましくは80％以上、より好ましくは90%以上を維持していることをいう。糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子の抗原結合活性が低くなった場合には、抗原結合分子中の１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入などによって、糖鎖受容体結合ドメインの導入前の抗原結合活性と同等に変化させ得る。本発明においては、そのような糖鎖受容体結合ドメインの導入後に１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入を行うことによって、結合活性が同等となった抗原結合分子も含まれる。また、糖鎖受容体結合ドメインによるFcRn特にヒトFcRnに対する結合を阻害しないとは、糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子のFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性が、糖鎖受容体結合ドメインの導入前の抗原結合分子が有するFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性の20％以上、好ましくは50％以上、さらに好ましくは80％以上、より好ましくは90%以上を維持していることをいう。糖鎖受容体結合ドメインの導入によって抗原結合分子のFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性が低くなった場合には、抗原結合分子中の１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入などによって、糖鎖受容体結合ドメインの導入前のFcRn特にヒトFcRnに対する結合活性と同等に変化させ得る。本発明においては、そのような糖鎖受容体結合ドメインの導入後に１又は複数のアミノ酸の置換、欠失、付加及び／又は挿入を行うことによって、結合活性が同等となった抗原結合分子も含まれる。
　また、糖鎖受容体結合ドメインは抗原結合分子を構成する抗原結合ドメインやFcRn結合ドメイン以外の部位にも導入され得る。
　本発明において対象となる抗原結合分子の構造は特に限定されず、いかなる構造の抗原結合分子も好適に使用され得るが、抗原結合ドメイン、FcRn特にヒトFcRnに対する結合ドメイン、および、二つ以上の糖鎖受容体ドメインを有する抗原結合分子の好適な例として、抗体が挙げられる。本発明の抗体の好適な例として、IgG抗体が挙げられる。抗体としてIgG抗体を用いる場合、その種類は限定されず、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4などのアイソタイプ（サブクラス）のIgGが使用され得る。また、本発明の抗原結合分子には抗体の定常領域が含まれ得るし、その定常領域の部分にはアミノ酸変異が導入され得る。導入されるアミノ酸変異は、例えば、Fcγレセプターへの結合を増大あるいは低減させたもの（Proc　Natl　Acad　Sci　U　S　A.　１(2006)　103　(11),　4005-10）等が挙げられるが、これらに限定されるものではない。また、IgG2定常領域などの適切な定常領域を選択することによって、pH依存的な結合を変化させることも可能である。
　本発明が対象とする抗原結合分子が抗体の場合、抗体はマウス抗体、ヒト抗体、ラット抗体、ウサギ抗体、ヤギ抗体、ラクダ抗体など、どのような動物由来の抗体も使用され得る。さらに、例えばキメラ抗体、中でもヒト化抗体などのアミノ酸配列を置換した改変抗体も好適に使用される。また、二種特異性抗体、各種分子を結合させた抗体修飾物、抗体断片を含むポリペプチドなども使用され得る。
　「キメラ抗体」とは、異なる動物由来の配列を組み合わせて作製される抗体である。キメラ抗体の具体的な例としては、例えば、マウス抗体の重鎖、軽鎖の可変（V）領域とヒト抗体の重鎖、軽鎖の定常（C）領域からなる抗体を挙げることができる。
　「ヒト化抗体」とは、再構成（reshaped）ヒト抗体とも称される、ヒト以外の哺乳動物由来の抗体、例えばマウス抗体の相補性決定領域（CDR（complementarity　determining　region））をヒト抗体のCDRへ移植したものである。CDRを同定するための方法は公知である（Kabat　et　al.,　Sequence　of　Proteins　of　Immunological　Interest　(1987),　National　Institute　of　Health,　Bethesda,　Md.、Chothia　et　al.,　Nature　(1989)　342,　877）。また、その一般的な遺伝子組換え手法も公知である（EP125023、WO1996/002576）。
　二重特異性抗体は、異なるエピトープを認識する可変領域を同一の抗体分子内に有する抗体をいう。二種特異性抗体は２つ以上の異なる抗原を認識する抗体であり得るし、同一抗原上の異なる２つ以上のエピトープを認識する抗体でもあり得る。
　又、抗体断片を含むポリペプチドとしては、例えば、Fab断片、F(ab')2断片、scFv（Nat　Biotechnol.　(2005)　23　(9),　1126-36）domain　antibody　(dAb)（WO2004/058821、WO2003/002609）、scFv-Fc（WO2005/037989）、dAb-Fc、Fc融合タンパク質等が挙げられる。Fc領域を含んでいる分子はFc領域をFcRn特にヒトFcRnに対する結合ドメインとして使用され得る。また、これらの分子にヒトFcRn結合ドメインが融合された分子も使用され得る。
　前記のように設計された抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメイン、および、糖鎖受容体結合ドメインをコードする遺伝子が作製され得る。遺伝子の作製法は公知であり、化学合成によって作製され得るし、また、PCR法等のポリヌクレオチドを構成するヌクレオチドを鋳型となるプライマー等の存在下において酵素反応によって連結することによっても作製され得る。前記のように設計された抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメイン、および、糖鎖受容体結合ドメインは、各ドメインを別々に後述される宿主細胞中で発現した後に培養液等から回収されたポリペプチドを架橋剤の存在下における化学反応によって連結させることが可能である。合成化学物リンカー（化学架橋剤）は、ペプチドの架橋に通常用いられている架橋剤、例えばN-ヒドロキシスクシンイミド（NHS）、ジスクシンイミジルスベレート（DSS）、ビス（スルホスクシンイミジル）スベレート（BS3）、ジチオビス（スクシンイミジルプロピオネート）（DSP）、ジチオビス（スルホスクシンイミジルプロピオネート）（DTSSP）、エチレングリコールビス（スクシンイミジルスクシネート）（EGS）、エチレングリコールビス（スルホスクシンイミジルスクシネート）（スルホ－EGS）、ジスクシンイミジル酒石酸塩（DST）、ジスルホスクシンイミジル酒石酸塩（スルホ－DST）、ビス［2-（スクシンイミドオキシカルボニルオキシ）エチル］スルホン（BSOCOES）、ビス［2-（スルホスクシンイミドオキシカルボニルオキシ）エチル］スルホン（スルホ-BSOCOES）などであり、これらの架橋剤は市販されている。
　また、前記のように設計された抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメイン、および、糖鎖受容体結合ドメインがペプチド結合によってインフレームで連結されるように設計された遺伝子を後述される宿主細胞中で発現した後に培養液等から回収することによっても取得され得る。ペプチド結合によってインフレームで連結する際に、各ドメインが直接連結され得るし、特定のペプチド配列を有するリンカーを介して連結され得る。各ドメインを結合するリンカーとしては、遺伝子工学により導入し得る任意のペプチドリンカー、又は合成化合物リンカー（例えば、Protein　Engineering　(1996)　9　(3),　299-305参照）に開示されるリンカー等を用いることができるが、本発明においてはペプチドリンカーが好ましい。ペプチドリンカーの長さは特に限定されず、目的に応じて当業者が適宜選択することが可能であるが、好ましい長さは5アミノ酸以上（上限は特に限定されないが、通常、30アミノ酸以下、好ましくは20アミノ酸以下）であり、特に好ましくは15アミノ酸である。
　例えば、ペプチドリンカーの場合：
Ser
Gly・Ser
Gly・Gly・SerSer・Gly・Gly
Gly・Gly・Gly・Ser（配列番号：１８）
Ser・Gly・Gly・Gly（配列番号：１９）
Gly・Gly・Gly・Gly・Ser（配列番号：２０）
Ser・Gly・Gly・Gly・Gly（配列番号：２１）
Gly・Gly・Gly・Gly・Gly・Ser（配列番号：２２）
Ser・Gly・Gly・Gly・Gly・Gly（配列番号：２３）
Gly・Gly・Gly・Gly・Gly・Gly・Ser（配列番号：２４）
Ser・Gly・Gly・Gly・Gly・Gly・Gly（配列番号：２５）
(Gly・Gly・Gly・Gly・Ser（配列番号：２０）)n
(Ser・Gly・Gly・Gly・Gly（配列番号：２１）)n
［nは１以上の整数である］等が挙げられる。ただし、ペプチドリンカーの長さや配列は目的に応じて当業者が適宜選択することができるリンカーが本発明においても使用され得る。
　本発明の製造方法において得られた遺伝子は、通常、適当なベクターへ担持（挿入）され、宿主細胞へ導入される。該ベクターとしては、挿入した核酸を安定に保持するものであれば特に制限されず、例えば宿主に大腸菌を用いるのであれば、クローニング用ベクターとしてはpBluescriptベクター（Stratagene社製）などが好ましいが、市販の種々のベクターを利用され得る。本発明の抗原結合分子を生産する目的においてベクターを用いる場合には、特に発現ベクターが有用である。発現ベクターとしては、試験管内、大腸菌内、培養細胞内、生物個体内で抗原結合分子を発現するベクターであれば特に制限されないが、例えば、試験管内発現であればpBESTベクター（プロメガ社製）、大腸菌であればpETベクター（Invitrogen社製）、培養細胞であればpME18S-FL3ベクター（GenBank　Accession　No.　AB009864）、生物個体であればpME18Sベクター（Mol　Cell　Biol.　8:466-472(1988)）などが好適に用いられるが、これらに限定されるものではない。ベクターへの本発明の遺伝子の挿入は、常法により、例えば、制限酵素サイトを用いたリガーゼ反応により実施され得る（Current　protocols　in　Molecular　Biology　edit.　Ausubel　et　al.　(1987)　Publish.　John　Wiley　&　Sons．Section　11.4-11.11）。
　上記宿主細胞としては特に制限はなく、目的に応じて種々の宿主細胞が用いられる。抗原結合分子を発現させるための細胞としては、例えば、細菌細胞（例：ストレプトコッカス、スタフィロコッカス、大腸菌、ストレプトミセス、枯草菌）、真菌細胞（例：酵母、アスペルギルス）、昆虫細胞（例：ドロソフィラS2、スポドプテラSF9）、動物細胞（例：CHO、COS、HeLa、C127、3T3、BHK、HEK293、Bowes　メラノーマ細胞）および植物細胞が例示され得る。宿主細胞へのベクター導入は、例えば、リン酸カルシウム沈殿法、電気パルス穿孔法（Current　protocols　in　Molecular　Biology　edit.　Ausubel　et　al.　(1987)　Publish.　John　Wiley　&　Sons．Section　9.1-9.9）、リポフェクション法、マイクロインジェクション法などの公知の方法で行うことが可能である。
　宿主細胞の培養は、公知の方法に従って実施され得る。例えば、動物細胞を宿主とした場合、培養液として、例えば、DMEM、MEM、RPMI1640、IMDMが使用され得る。その際、FBS、牛胎児血清（FCS）等の血清補液が併用された培地が用いられた培養によっても、または、無血清培地が用いられた培養によっても細胞は培養され得る。培養時のpHは、約6～8の間から適宜選択され得るが、これに限定されず培養ごとに、または、培養の期間中培養時期に応じて適宜異なるpHが選択され得る。培養は、通常、約30～40℃で約15～200時間行い、必要に応じて培地の交換、通気、攪拌が実施される。
　宿主細胞において発現した抗原結合分子を小胞体の内腔に、細胞周辺腔に、または細胞外の環境に分泌させるために、適当な分泌シグナルが所望のポリペプチドに組み込まれ得る。これらのシグナルは目的の抗原結合分子に対して内因性シグナルであり得るし、異種シグナルでもあり得る。
　一方、in　vivoでポリペプチドを産生させる系としては、例えば、動物を使用する産生系や植物を使用する産生系が挙げられる。目的とする遺伝子が挿入されたベクターが導入された動物又は植物の細胞内において産生された当該遺伝子がコードするポリペプチドが、その体液や生体から回収される。本発明における「宿主」とは、これらの動物、植物を包含する。
　動物が宿主として使用される産生系の場合、哺乳類動物、昆虫が用いられる。哺乳類動物としては、ヤギ、ブタ、ヒツジ、マウス、ウシ等が用いられ得る（Vicki　Glaser,　SPECTRUM　Biotechnology　Applications　(1993)）。また、哺乳類動物が用いられる場合、トランスジェニック動物が適宜使用され得る。
　例えば、本発明の抗原結合分子をコードするポリヌクレオチドが、ヤギβカゼインのような乳汁中に固有に産生されるポリペプチドをコードする遺伝子との融合遺伝子として調製される。次いで、この融合遺伝子を含むポリヌクレオチド断片がヤギの胚へ注入され、この胚が雌のヤギへ移植される。胚を受容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギ又はその子孫が産生する乳汁から、目的の抗原結合分子が回収され得る。トランスジェニックヤギから産生される抗原結合分子を含む乳汁量を増加させるために、適宜ホルモンがトランスジェニックヤギに投与され得る（Ebert　et　al.,　Bio/Technology　(1994)　12,　699-702）。
　また、本発明の抗原結合分子を産生させる昆虫として、例えばカイコが用いられ得る。カイコが用いられる場合、目的の抗原結合分子をコードするポリヌクレオチドを挿入したバキュロウィルスをカイコに感染させることによって、このカイコの体液から目的の抗原結合分子が回収され得る。
　さらに、植物を本発明の抗原結合分子の産生に使用する場合、例えばタバコが用いられ得る。タバコを用いる場合、目的とする抗原結合分子をコードするポリヌクレオチドが挿入された植物発現用ベクター、例えばpMON　530、がアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium　tumefaciens）のようなバクテリアに導入される。このバクテリアを感染させたタバコ、例えば、ニコチアナ・タバカム（Nicotiana　tabacum）の葉から、所望の抗原結合分子が回収され得る（Ma　et　al.,　Eur.　J.　Immunol.　(1994)　24,　131-8）。また、同様のバクテリアを感染させたウキクサ（Lemna　minor）のクローン細胞より、所望の抗原結合分子が回収され得る（Cox　KM　et　al.　Nat.　Biotechnol.　(2006)　(12),　1591-1597）。
　本発明における抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインの例として、所望の糖鎖が結合された糖鎖受容体結合ドメインが用いられる場合、糖鎖受容体結合ドメインに糖鎖を結合する方法は公知の方法が採用され得る。たとえば、タンパク質分泌能を有する不死化哺乳動物細胞株の培養細胞から細胞抽出液を調製し、前記抽出液に抗体をコードするmRNAを添加することを特徴とする無細胞タンパク質合成系における翻訳後修飾された抗体の製造方法（特開2006-141241）等のような無細胞系の一連の酵素方法が、所望の糖鎖が結合された糖鎖受容体結合ドメインの製造方法に採用され得る。このような抗原結合分子に対してさらに酵素を用いて処理する工程も本発明の製造方法には含まれ得る。
　上記のように産生された抗原結合分子の糖鎖構造は単一である場合もあるが、複数の糖鎖が連結された混合物として産生されることもある。本発明において、こうした混合物も好適に使用され得る。また、特定の糖鎖がその糖鎖結合ドメインに連結された抗原結合分子も本発明において好適に使用され得る。
　本発明における抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに特定の糖鎖を連結する方法として複数の公知の方法が採用され得るが、そのような公知の方法の一つとして、天然または組換え遺伝子手法等によって人工的に作製された抗原結合分子が有する糖鎖の性質を利用することによって、特定の糖鎖を有する抗原結合分子を精製する方法が挙げられる。高マンノース型糖鎖を有する抗体がConA-sepharoseを用いたアフィニティクロマトグラフィを用いて精製されることが知られている（Millward（Biologicals　(2008)　36,　49-60））。こうした精製法は、本発明において非還元末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子を作製するために使用可能である。
　必要に応じ、抗原結合分子の精製前又は精製後に適当なタンパク質修飾酵素を作用させることにより、任意に修飾が加えられ、部分的にまたは包括的にペプチド等の修飾分子が除去され得る。タンパク質修飾酵素としては、例えば、トリプシン、キモトリプシン、リシルエンドペプチダーゼ、プロテインキナーゼ、グルコシダーゼなどが用いられ得る。このような抗原結合分子に対してさらに酵素を用いて処理する工程も本発明の製造方法には含まれ得る。
　本発明における抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに特定の糖鎖を連結する方法として複数の公知の方法が採用され得るが、特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、酵素処理も適宜採用され得る。後に実施例で記載されるように、末端がガラクトースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子が、末端がシアル酸である複合型糖鎖を有する抗原結合分子からシアリダーゼ処理によって作製され得る。また、高マンノース型糖鎖を有する抗体がシアリダーゼおよびβガラクトシダーゼ処理によりガラクトースがその糖鎖から除去された形で作製されることが知られている（Newkirk（Clin.Exp.Immunol.　(1996)　106,　259-264））。こうしたシアリダーゼおよびβガラクトシダーゼ処理を含む作製法は、本発明において末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子を作製するために使用可能である。このような抗原結合分子に対してさらに酵素を用いて処理する工程も本発明の製造方法には含まれ得る。
　後述するような宿主細胞に導入することによって、当該宿主細胞の培養液から所望の糖鎖が結合される糖鎖受容体結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子が産生され得る。
　異なる態様では、本発明の特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、当該抗原結合分子をコードする組換え遺伝子が形質導入された、特定の糖鎖が蓄積するように（遺伝的または組換え遺伝子手法を含みこれらに限定されない）そのグリコシダーゼ活性が変化した宿主細胞の培養液から回収する方法も適宜採用され得る。高マンノース型のN結合型糖鎖を有する抗体が、当該抗体をコードする組換え遺伝子が形質導入されたN-アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼI活性を欠失するCHO細胞由来のLec1変異株の培養液より回収されることが知られている（Wright　and　Morrison（J.Exp.Med.　(1994)　180,　1087-1096））。本発明において非還元末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子は、当該分子をコードする組換え遺伝子が形質導入されたLec1変異株の培養液から回収され得る。
　さらに別の態様では、本発明の特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、当該抗原結合分子を産生する細胞の培養に際して特定のグリコシダーゼ反応を阻害する阻害剤を添加することによって培養液に蓄積された特定の糖鎖を有する抗原結合分子を回収する方法も適宜採用され得る。フコースを有しない高マンノース型のN結合型糖鎖を有する抗体が、その抗体を産生するCHO細胞の培養に際してkifunesineを添加することによって当該細胞の培養液から回収されることが知られている（Zhou（Biotechnol.　Bioeng.　(2008)　99,　652-665））。本発明においてフコースを有せず、末端がマンノースであるN結合型糖鎖を有する抗原結合分子は、たとえば当該分子をコードする組換え遺伝子が形質導入されたCHO細胞を、kifunesineを添加して培養することによってその培養液から回収され得る。また、たとえば上述したグリコシダーゼ活性が変化した宿主細胞の培養に際してこうした阻害剤を添加する方法を組み合わせることによっても、本発明の特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得することが可能である。このような組合せによって特定の糖鎖を有する抗体を回収することが公知であり（Kandaら（Glycobiology　(2007)　17,　104-118））、本発明において特定の糖鎖を有する抗原結合分子を取得する目的で、同様の組合せが適宜採用され得る。
　上記のように産生された抗原結合分子の糖鎖構造は単一である場合もあるが、複数の糖鎖が連結された混合物として産生されることもある。本発明において、こうした混合物も好適に使用され得る。また、特定の糖鎖がその糖鎖結合ドメインに連結された抗原結合分子も本発明において好適に使用され得る。
　このようにして得られた抗原結合分子は、宿主細胞内または細胞外（培地、乳汁など）から単離され、実質的に純粋で均一な抗原結合分子として精製され得る。抗原結合分子の分離、精製に際して使用される分離、精製のための方法は、通常のポリペプチドの精製で使用されている分離、精製のための方法の中から目的に応じて組み合わされて適宜選択されるが、特定の方法に限定されるものではない。例えば、クロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、溶媒沈殿、溶媒抽出、蒸留、免疫沈降、SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動、等電点電気泳動法、透析、再結晶等が適宜選択、組み合わせて抗原結合分子が分離、精製され得る。
　クロマトグラフィーとしては、例えばアフィニティクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、ゲル濾過、逆相クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー等が挙げられる（Strategies　for　Protein　Purification　and　Characterization:　A　Laboratory　Course　Manual.　Ed　Daniel　R.　Marshak　et　al.(1996)　Cold　Spring　Harbor　Laboratory　Press）。これらのクロマトグラフィーは、液相クロマトグラフィー、例えばHPLC、FPLC等の液相クロマトグラフィーを用いて行うことができる。アフィニティクロマトグラフィーに用いるカラムとしては、プロテインAカラム、プロテインGカラムが挙げられる。例えば、プロテインAを用いたカラムとして、Hyper　D,　POROS,　Sepharose　F.　F.　(Pharmacia製)等が挙げられる。
　前記のように作製された抗原結合分子が、抗原結合活性、FcRn特にヒトFcRnに対する結合活性、糖鎖受容体結合活性等の点において所望の性質を有しているか否かが、前記で述べられた抗原結合活性、FcRn結合活性、または、糖鎖受容体結合活性の測定法を用いて評価される。このような評価の結果、糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを設計する工程、および、糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを含む抗原結合分子のポリペプチドをコードする遺伝子を作製する工程、がさらに一回以上繰り返されることによって所望の性質を有している抗原結合分子が作製される。
　本発明の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子、特にヒト由来の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子は、糖鎖受容体に対してpH依存的に結合し、且つ、あるいは、または、pH中性域において糖鎖受容体結合活性、特にヒト由来の糖鎖受容体結合活性を有し、pH酸性域における糖鎖受容体との結合活性がpH中性域における糖鎖受容体との結合活性よりも低くすることが出来れば、抗原結合分子による抗原の細胞内への取込を促進させ、抗原結合分子の投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させ、抗原結合分子の薬物動態を向上させ、１つの抗原結合分子が結合可能な抗原の数を増加させることが可能である。
　本発明の製造方法により製造される抗原結合分子は、その投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させる抗原結合分子である。従って、本発明の製造方法は、その投与により血漿中の抗原濃度の減少を促進させる抗原結合分子の製造方法として利用され得る。
　又、本発明の製造方法により製造される抗原結合分子は、薬物動態が向上した抗原結合分子である。従って、本発明の製造方法は、薬物動態が向上した抗原結合分子の製造方法として利用され得る。
　又、製造方法により製造される抗原結合分子は、ヒト、マウス、サルなどの動物に投与した際に、１つの抗原結合分子により結合可能な抗原の数を増加させることが可能であると考えられる。従って、本発明の製造方法は、１つの抗原結合分子により結合可能な抗原の数を増加した抗原結合分子の製造方法として利用され得る。
　さらに、本発明の製造方法により製造される抗原結合分子は、ヒト、マウス、サルなどの動物に投与した際に、細胞外で抗原結合分子に結合した抗原を細胞内で抗原結合分子から解離させることが可能であると考えられる。従って、本発明の製造方法は、細胞外で結合した抗原を細胞内で解離することが可能である抗原結合分子の製造方法として利用され得る。
　さらに、本発明の製造方法により製造される抗原結合分子は、ヒト、マウス、サルなどの動物に投与した際に、抗原と結合した状態で細胞内に取り込まれた抗原結合分子を、抗原と結合していない状態で細胞外に放出させることが可能であると考えられる。従って、本発明の製造方法は、抗原と結合した状態で細胞内に取り込まれ、抗原と結合していない状態で細胞外に放出される抗原結合分子の製造方法として利用することができる。
　又、これらの抗原結合分子は、通常の抗原結合分子と比較して、その投与により血漿中の抗原濃度を低下させる作用が高いことから、医薬品として特に優れていると考えられる。従って、本発明の製造方法は、医薬組成物として用いる為の抗原結合分子の製造方法として利用することが可能である。
医薬組成物
　また本発明は、本発明の抗原結合分子、または本発明の製造方法により製造された抗原結合分子を含む医薬組成物に関する。本発明の抗原結合分子または本発明の製造方法により製造された抗原結合分子はその投与により通常の抗原結合分子と比較して血漿中の抗原濃度を低下させる作用が高いことから医薬組成物として有用である。本発明の医薬組成物は医薬的に許容される担体を含むことができる。
　本発明において医薬組成物とは、通常、疾患の治療もしくは予防、あるいは検査・診断のための薬剤をいう。
　本発明の医薬組成物は、当業者に公知の方法で製剤化され得る。例えば、本発明の医薬組成物は、水もしくはそれ以外の薬学的に許容し得る液との無菌性溶液、又は懸濁液剤の注射剤の形で非経口的に使用され得る。例えば、本発明の医薬組成物は、薬理学上許容される担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤、香味剤、賦形剤、ベヒクル、防腐剤、結合剤などと適宜組み合わせて、一般に認められた製薬実施に要求される単位用量形態で混和することによって製剤化される。これら製剤における有効成分量は、指示された範囲の適当な容量が得られるように設定される。
　注射のための無菌組成物は注射用蒸留水のようなベヒクルを用いて通常の製剤実施に従って処方することができる。注射用の水溶液としては、例えば生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬（例えばD-ソルビトール、D-マンノース、D-マンニトール、塩化ナトリウム）を含む等張液が挙げられる。適当な溶解補助剤、例えばアルコール（エタノール等）、ポリアルコール（プロピレングリコール、ポリエチレングリコール等）、非イオン性界面活性剤（ポリソルベート80（TM）、HCO-50等）も併用され得る。
　油性液としてはゴマ油、大豆油があげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル及び／またはベンジルアルコールが併用され得る。また、緩衝剤（例えば、リン酸塩緩衝液及び酢酸ナトリウム緩衝液）、無痛化剤（例えば、塩酸プロカイン）、安定剤（例えば、ベンジルアルコール及びフェノール）、酸化防止剤と配合され得る。調製された注射液は通常、適当なアンプルに充填される。
　本発明の医薬組成物は、好ましくは非経口投与により投与される。例えば、本発明の医薬組成物は、注射剤型、経鼻投与剤型、経肺投与剤型、経皮投与型の組成物として調製され得る。例えば、本発明の医薬組成物は、静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射などにより全身または局部的に投与され得る。
　本発明の医薬組成物の投与方法は、患者の年齢、症状により適宜好適な投与方法が選択され得る。抗原結合分子を含有する医薬組成物の投与量は、例えば、一回につき体重1　kgあたり0.0001　mgから1000　mgの範囲に設定され得る。また、例えば、患者あたり0.001～100000　mgの範囲の投与量に設定され得るが、本発明の医薬組成物の投与量はこれらの数値に必ずしも制限されるものではない。投与量及び投与方法は、患者の体重、年齢、症状などにより変動するが、当業者であればそれらの条件を考慮し適当な投与量及び投与方法が設定され得る。
　なお、本発明で記載されているアミノ酸配列に含まれるアミノ酸は翻訳後に修飾（例えば、N末端のグルタミンのピログルタミル化によるピログルタミン酸への修飾は当業者によく知られた修飾である）を受ける場合もあるが、そのようにアミノ酸が翻訳後修飾された抗原結合分子も本発明で記載されているアミノ酸配列によって特定される抗原結合分子の範囲に含まれる。
糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進させる方法
　本発明はさらに、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原を、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の当該細胞の細胞内への取込を促進させる方法を提供する。
　本発明において「細胞内への取込」とは、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれることを意味する。また本発明において「細胞内への取込を促進させる」とは、細胞外において抗原と結合する抗原結合分子が細胞内に取り込まれる速度が促進されることを意味する。したがって、本発明において、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込が促進されたかどうかは、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込速度が増大したかどうかで判断され得る。抗原の細胞内への取り込み速度は、例えば、糖鎖受容体発現細胞を含む培養液に抗原結合分子と抗原を添加し、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の培養液中濃度の減少を経時的に測定すること、あるいは、糖鎖受容体発現細胞内に取り込まれた抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の量を経時的に測定すること、により算出することができる。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は前記のように生体外でも行われ得るし、抗原結合分子を投与することによって生体内でも行われ得る。
　本発明が提供する、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込速度を促進させる方法、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって血漿中の抗原の消失速度を促進させることができる。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。したがって、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込が促進されたかどうかは、例えば、血漿中に存在する抗原の消失速度が、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて加速されているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。
　また、取込が促進されているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　また、本発明は、さらに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進する方法を提供する。さらに本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化させた抗原結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進する方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する抗原結合ドメインの結合活性が変化するアミノ酸である抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進する方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は生体外のほか、生体内でも行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することも含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法
　また本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインとひとつ以上の糖鎖受容体結合ドメインを有する抗原結合分子を、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法を提供する。
　本発明における「一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数」とは、抗原結合分子が分解されて消失するまでの間に結合することができる抗原の数のことを意味する。本発明における「一分子当りの抗原結合分子により結合できる抗原の数を増加させる」とは、抗原結合分子に結合した抗原分子が解離して再度抗原分子に結合する回数を増加させることをいう。抗原結合分子に結合する抗原分子は、両分子が存在する反応系において存在する同一の抗原分子でもあり得るし、異なる分子でもあり得る。すなわち、いい換えれば、当該反応系において抗原結合分子が抗原に結合する延べ回数を表す。別の表現では、抗原に結合した抗原結合分子が、抗原が結合した抗原結合分子が細胞内に取り込まれエンドソーム内で抗原を解離した後に、抗原結合分子が細胞外に戻ることを１サイクルと仮定したときに、抗原結合分子が分解されて消失するまでの間に回すことができるこのサイクルの数が増加することである。pH中性域における糖鎖受容体への結合活性を有する本発明の抗原結合分子は糖鎖受容体に結合した後に、エンドサイトーシスによって当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内に取り込まれる。酸性域において糖鎖受容体から遊離した本発明の抗原結合分子は酸性域においてFcRn特にヒトFcRnへ結合することによって、細胞外に再度リサイクルされる。酸性域において抗原結合分子から抗原が解離した上で、細胞外にリサイクルされる本発明の抗原結合分子は、抗原に再度結合することが可能となる。したがって、サイクル数が増えたかどうかは、前述の「細胞内への取込を促進」されているか否か、あるいは、後述の「薬物動態が向上」するか否かによって、判断され得る。
　本発明が提供する、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって血漿中の抗原の消失速度を促進させることができる。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。したがって、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数が増加されたかどうかは、例えば、血漿中に存在する抗原の消失速度が、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて加速されているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。
　また、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数が増加されているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　また、本発明は、さらに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化し、一分子の抗原結合分子が結合できる抗原の数が増えている抗原結合分子を当該抗原結合分子が含む糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子の抗原結合分子により結合できる抗原の数を増やす方法を提供する。さらに本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、一分子の抗原結合分子が結合できる抗原の数が増えている抗原結合分子を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子の抗原結合分子により結合できる抗原の数を増やす方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する結合活性が変化するアミノ酸であり、一分子の抗原結合分子が結合できる抗原の数が増えている抗原結合分子を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子の抗原結合分子により結合する抗原の数を増加させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は生体外のほか、生体内でも行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することも含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む細胞外に存在する抗原を減少させる方法
　また本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインとひとつ以上の糖鎖受容体結合ドメインを有する抗原結合分子を、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、細胞外に存在する抗原を減少させる方法を提供する。
　細胞外に存在する抗原とは、糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外に存在する抗原を意味する。糖鎖受容体を発現する細胞が生体内に存在する場合は、血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等の細胞外に存在する抗原が細胞外に存在する抗原の一例として例示され得る。しかし、生体に投与された本発明の抗原結合分子が糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外で結合することができる限り、これらの体液に存在する抗原に限定されるものではない。細胞外に存在する抗原の特に好ましい例としては、血漿に存在する抗原が好ましい。糖鎖受容体を発現する細胞が生体外に存在する場合は、生体から取り出された血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等のほか、当該細胞を培養する培養液に存在する抗原が細胞外に存在する抗原の一例として例示され得る。
　pH中性域における糖鎖受容体への結合活性を有する本発明の抗原結合分子は糖鎖受容体に結合した後に、エンドサイトーシスによって当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内に取り込まれる。酸性域において糖鎖受容体から遊離した本発明の抗原結合分子は酸性域においてFcRn特にヒトFcRnへ結合することによって、細胞外に再度リサイクルされる。酸性域において抗原結合分子から抗原が解離した上で、細胞外にリサイクルされる本発明の抗原結合分子は、抗原に再度結合することが可能となる。この場合において解離した抗原は細胞内のリソゾーム内で分解を受ける。したがって、抗原結合分子がリサイクルを繰り返すごとに本発明の抗原結合分子に結合した糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外に存在する抗原が、糖鎖受容体を発現する細胞内のリソゾームで分解される。こうした抗原の分解の結果、細胞外に存在する抗原が減少するものと考えられる。細胞外に存在する抗原が減少したか否かは、糖鎖受容体を発現する細胞が生体内に存在する場合は、血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等の細胞外に存在する抗原の量を測定することによって、また、糖鎖受容体を発現する細胞が生体外に存在する場合は、生体から取り出された血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等のほか、当該細胞を培養する培養液に存在する抗原の量を測定することによって評価され得る。
　本発明が提供する、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、細胞外に存在する抗原を減少させる方法、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって細胞外に存在する抗原を減少させることができる。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。したがって、細胞外に存在する抗原が減少したかどうかは、例えば、血漿中に存在する抗原の量が、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて減少しているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。
　また、血漿中の抗原の量が減少しているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　また、本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、当該細胞の細胞外に存在する抗原を減少させる方法を提供する。さらに本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、本発明の抗原結合分子を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、当該細胞の細胞外に存在する抗原を減少させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する結合活性が変化するアミノ酸であり、本発明の抗原結合分子を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、当該細胞の細胞外に存在する抗原を減少させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は生体外のほか、生体内でも行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することも含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
糖鎖受容体を発現する細胞に生体内で接触させることを含む抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法
　また本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと二つ以上の糖鎖受容体結合ドメインを有する抗原結合分子を、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内で接触させることを含む、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。
　本発明において、「薬物動態の向上」、「薬物動態の改善」または「優れた薬物動態」は、「血漿中（血中）滞留性の向上」、「血漿中（血中）滞留性の改善」、「優れた血漿中（血中）滞留性」、「血漿中（血中）滞留性を長くする」と言い換えることが可能であり、これらの語句は同じ意味で使用される。
　本発明において「薬物動態が向上する」とは、抗原結合分子がヒト、マウス、ラット、サル、ウサギ、イヌなどの動物に投与されてから、血漿中から消失するまで（例えば、細胞内で分解される等して抗原結合分子が血漿中に戻ることが不可能な状態になるまで）の時間が長くなることのみならず、抗原結合分子が投与されてから分解されて消失するまでの間に抗原に結合可能な状態（例えば、抗原結合分子が抗原に結合していない状態）で血漿中に滞留する時間が長くなることも含む。すなわち抗原に結合していない抗原結合分子（抗原非結合型抗原結合分子）が分解されて消失するまでの時間が長くなることを含む。抗原結合分子が血漿中に存在していても、その抗原結合分子にすでに抗原が結合している場合は、その抗原結合分子は新たな抗原に結合できない。そのため抗原結合分子が抗原に結合していない時間が長くなれば、新たな抗原に結合できる時間が長くなり（新たな抗原に結合できる機会が多くなり）、生体内で抗原が抗原結合分子に結合していない時間を減少させることができ、抗原が抗原結合分子に結合している時間を長くすることができる。抗原結合分子の投与により血漿中からの抗原の消失を加速することができれば、抗原非結合型抗原結合分子の血漿中濃度は増加し、また、抗原が抗原結合分子に結合している時間が長くなる。つまり、本発明における「抗原結合分子の薬物動態の向上」とは、抗原非結合型抗原結合分子のいずれかの薬物動態パラメーターの改善（血漿中半減期の増加、平均血漿中滞留時間の増加、血漿中クリアランスの低下のいずれか）、あるいは、抗原結合分子投与後に抗原が抗原結合分子に結合している時間の延長、あるいは、抗原結合分子による血漿中からの抗原の消失が加速されること、を含む。抗原結合分子あるいは抗原非結合型抗原結合分子の血漿中半減期、平均血漿中滞留時間、血漿中クリアランス等のいずれかのパラメーター（ファーマコキネティクス　演習による理解（南山堂））を測定することにより判断することが可能である。例えば、抗原結合分子をマウス、ラット、サル、ウサギ、イヌ、ヒトなどに投与した場合、抗原結合分子あるいは抗原非結合型抗原結合分子の血漿中濃度を測定し、各パラメーターを算出し、血漿中半減期が長くなった又は平均血漿中滞留時間が長くなった場合等には、抗原結合分子の薬物動態が向上したと評価される。これらのパラメーターは当業者に公知の方法により測定することが可能であり、例えば、薬物動態解析ソフトWinNonlin（Pharsight）を用いて、付属の手順書に従いNoncompartmental解析することによって適宜評価され得る。抗原に結合していない抗原結合分子の血漿中濃度の測定は当業者公知の方法で実施することが可能であり、例えば、Clin　Pharmacol.　(2008)　48　(4)　406-17において測定されている方法を用いることができる。
　本発明において「薬物動態が向上する」とは、抗原結合分子投与後に抗原が抗原結合分子に結合している時間が延長されたことも含む。抗原結合分子投与後に抗原が抗原結合分子に結合している時間が延長されたか否かは、抗原結合分子に結合していない抗原結合分子非結合型抗原の血漿中濃度を測定し、抗原結合分子非結合型抗原の血漿中濃度、あるいは、総抗原濃度に対する抗原結合分子非結合型抗原濃度の割合が上昇してくるまでの時間により判断することが可能である。
　抗原結合分子非結合型抗原の血漿中濃度、あるいは、総抗原濃度に対する抗原結合分子非結合型抗原濃度の割合は当業者公知の方法で実施することが可能であり、例えば、Pharm　Res.　(2006)　23(1)　95-103において測定されている方法が使用され得る。また、抗原が何らかの機能を生体内で示す場合、抗原が抗原の機能を中和する抗原結合分子（アンタゴニスト分子）と結合しているかどうかは、その抗原の機能が中和されているかどうかで評価することも可能である。抗原の機能が中和されているかどうかは、抗原の機能を反映する何らかの生体内のマーカーを測定することで評価することが可能である。抗原が抗原の機能を活性化する抗原結合分子（アゴニスト分子）と結合しているかどうかは、抗原の機能を反映する何らかの生体内のマーカーを測定することで評価することが可能である。
　非結合型の抗原の血漿中濃度の測定、総抗原量に対する非結合型の抗原量の割合の測定、生体内マーカーの測定などの測定は特に限定されないが、抗原結合分子が投与されてから一定時間が経過した後に行われることが好ましい。本発明において抗原結合分子が投与されてから一定時間が経過した後とは、特に限定されず、投与された抗原結合分子の性質等により当業者が適時決定することが可能であり、例えば抗原結合分子を投与してから１日経過後、抗原結合分子を投与してから３日経過後、抗原結合分子を投与してから７日経過後、抗原結合分子を投与してから１４日経過後、抗原結合分子を投与してから２８日経過後などが挙げられる。
　本発明においては、ヒトにおける薬物動態が向上することが好ましい。ヒトでの血漿中滞留性を測定することが困難である場合には、マウス（例えば、正常マウス、ヒト抗原発現トランスジェニックマウス、ヒトFcRnを発現するトランスジェニックマウス３２系統または２７６系統（Jackson　Laboratories）（Methods　Mol　Biol.　(2010)　602,　93-104）等のトランスジェニックマウス、等）やサル（例えば、カニクイザルなど）での血漿中滞留性にもとづいて、ヒトでの血漿中滞留性が予測され得る。
　また、本発明は、さらにイオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む上記薬物動態が向上されている抗原結合分子を生体内に投与することを含む抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。さらに本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、上記薬物動態が向上されている抗原結合分子を生体内に投与することを含む抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する結合活性が変化するアミノ酸であり、上記薬物動態が向上されている抗原結合分子を生体内に投与することを含む抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離を促進させる方法
　さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと二つ以上の糖鎖受容体結合ドメインを有する抗原結合分子を、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、当該細胞の細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。
　本発明において抗原が抗原結合分子から解離する箇所は細胞内であればいかなる個所でもよいが、好ましくは早期エンドソーム内である。本発明において、「細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離」とは、細胞外で抗原結合分子に結合した抗原が、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞と生体内または生体外で接触された結果、細胞内に取り込まれた抗原全てが当該細胞内で抗原結合分子から解離する必要はなく、当該細胞内において、抗原結合分子が解離した抗原（または、抗原が解離した抗原結合分子）の割合が高くなっていればよい。
　pH中性域における糖鎖受容体への結合活性を有する本発明の抗原結合分子は糖鎖受容体に結合した後に、エンドサイトーシスによって当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内に取り込まれる。酸性域において糖鎖受容体から遊離した本発明の抗原結合分子は酸性域においてFcRn特にヒトFcRnへ結合することによって、細胞外に再度リサイクルされる。酸性域において抗原結合分子から抗原が解離した上で、細胞外にリサイクルされる本発明の抗原結合分子は、抗原に再度結合することが可能となる。この場合において解離した抗原は細胞内のリソゾーム内で分解を受ける。したがって、抗原結合分子がリサイクルを繰り返すごとに本発明の抗原結合分子に結合した糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外に存在する抗原が、糖鎖受容体を発現する細胞内のリソゾームで分解される。こうした抗原の分解の結果、細胞外に存在する抗原が減少するものと考えられる。細胞外に存在する抗原が減少したか否かは、糖鎖受容体を発現する細胞が生体内に存在する場合は、血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等の細胞外に存在する抗原の量を測定することによって、また、糖鎖受容体を発現する細胞が生体外に存在する場合は、生体から取り出された血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等のほか、当該細胞を培養する培養液に存在する抗原の量を測定することによって評価され得る。
　本発明が提供する、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原を当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、当該細胞の細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離を促進させる方法、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって当該細胞の細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離を促進させることができる。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。したがって、細胞外に存在する抗原が減少したかどうかは、例えば、血漿中に存在する抗原の量が、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて減少しているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。
　また、血漿中の抗原の量が減少しているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は、生体内で行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することを含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
　さらに本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子と当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に接触させることを含む、当該細胞外で当該抗原結合分子に結合した抗原の当該細胞内での当該抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。さらに本発明は、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む本発明の抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に接触させることを含む、当該細胞外で当該抗原結合分子に結合した抗原の当該細胞内での当該抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する抗原結合ドメインの結合活性が変化するアミノ酸である抗原結合ドメインを含む抗原結合分子と当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に接触させることを含む、当該細胞外で当該抗原結合分子に結合した当該抗原の当該細胞内での当該抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
抗原結合分子または抗原結合分子に結合した抗原の取込を促進するための方法
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、生体内または生体外における当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内への抗原結合分子または抗原結合分子に結合した抗原の取込を促進するための方法を提供する。
　本発明において「細胞内への取込」とは、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれることを意味する。また本発明において「細胞内への取込を促進させる」とは、細胞外において抗原と結合する抗原結合分子（抗原結合分子と結合する抗原）が細胞内に取り込まれる速度が促進されることを意味する。したがって、本発明において、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込が促進されたかどうかは、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込速度が増大したかどうかで判断され得る。抗原の細胞内への取り込み速度は、例えば、糖鎖受容体発現細胞を含む培養液に抗原結合分子と抗原を添加し、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の培養液中濃度の減少を経時的に測定すること、あるいは、糖鎖受容体発現細胞内に取り込まれた抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の量を経時的に測定すること、により算出することができる。
　本発明において、「糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内への本発明の抗原結合分子の取込は生体外でも行われ得るし、抗原結合分子を投与することによって生体内でも行われ得る。すなわち、本発明において、抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込が促進されたかどうかは、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって血漿中に存在する抗原の消失速度が促進されたか、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて加速されているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。
　また、取込が促進されているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は、生体内で行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することを含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
　また、本発明は、さらに、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子または抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進する方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原結合分子の抗原結合ドメインの少抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子または抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進する方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する抗原結合ドメインの結合活性が変化するアミノ酸である、抗原結合分子または抗原結合分子に結合する抗原の細胞内への取込を促進する方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、生体内または生体外において一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させるための方法を提供する。
　本発明における「一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数」とは、抗原結合分子が分解されて消失するまでの間に結合することができる抗原の数のことを意味する。本発明における「一分子当りの抗原結合分子により結合できる抗原の数を増加させる」とは、抗原結合分子に結合した抗原分子が解離して再度抗原分子に結合する回数を増加させることをいう。抗原結合分子に結合する抗原分子は、両分子が存在する反応系において存在する同一の抗原分子でもあり得るし、異なる分子でもあり得る。すなわち、いい換えれば、当該反応系において抗原結合分子が抗原に結合する延べ回数を表す。別の表現では、抗原に結合した抗原結合分子が、抗原が結合した抗原結合分子が細胞内に取り込まれエンドソーム内で抗原を解離した後に、抗原結合分子が細胞外に戻ることを１サイクルと仮定したときに、抗原結合分子が分解されて消失するまでの間に回すことができるこのサイクルの数が増加することである。pH中性域における糖鎖受容体への結合活性を有する本発明の抗原結合分子は糖鎖受容体に結合した後に、エンドサイトーシスによって当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内に取り込まれる。酸性域において糖鎖受容体から遊離した本発明の抗原結合分子は酸性域においてFcRn特にヒトFcRnへ結合することによって、細胞外に再度リサイクルされる。酸性域において抗原結合分子から抗原が解離した上で、細胞外にリサイクルされる本発明の抗原結合分子は、抗原に再度結合することが可能となる。したがって、サイクル数が増えたかどうかは、前述の「細胞内への取込を促進」されているか否か、あるいは、後述の「薬物動態が向上」するか否かによって、判断され得る。
　本発明において、「糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　本発明の抗原結合分子の抗原に対する結合は生体外でも行われ得るし、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数が増加されたかどうかは、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって血漿中に存在する抗原の消失速度が促進されたか、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて加速されているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。
　また、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数が増加されているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は、生体内で行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することを含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
　また、本発明は、さらに、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子一分子が生体内または生体外において結合できる抗原の数を増やす方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子一分子が結合できる抗原の数が増えている抗原結合分子を当該抗原結合分子が含む糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、生体内または生体外において一分子の抗原結合分子により結合できる抗原の数を増やす方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度またはpHの条件によって抗原に対する結合活性が変化するアミノ酸である抗原結合分子の一分子が生体内または生体外において結合する抗原の数を増加させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法を提供する。
　細胞外に存在する抗原とは、糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外に存在する抗原を意味する。糖鎖受容体を発現する細胞が生体内に存在する場合は、血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等の細胞外に存在する抗原が細胞外に存在する抗原の一例として例示され得る。しかし、生体に投与された本発明の抗原結合分子が糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外で結合することができる限り、これらの体液に存在する抗原に限定されるものではない。細胞外に存在する抗原の特に好ましい例としては、血漿に存在する抗原が好ましい。糖鎖受容体を発現する細胞が生体外に存在する場合は、生体から取り出された血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等のほか、当該細胞を培養する培養液に存在する抗原が細胞外に存在する抗原の一例として例示され得る。
　pH中性域における糖鎖受容体への結合活性を有する本発明の抗原結合分子は糖鎖受容体に結合した後に、エンドサイトーシスによって当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内に取り込まれる。酸性域において糖鎖受容体から遊離した本発明の抗原結合分子は酸性域においてFcRn特にヒトFcRnへ結合することによって、細胞外に再度リサイクルされる。酸性域において抗原結合分子から抗原が解離した上で、細胞外にリサイクルされる本発明の抗原結合分子は、抗原に再度結合することが可能となる。この場合において解離した抗原は細胞内のリソゾーム内で分解を受ける。したがって、抗原結合分子がリサイクルを繰り返すごとに本発明の抗原結合分子に結合した糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外に存在する抗原が、糖鎖受容体を発現する細胞内のリソゾームで分解される。こうした抗原の分解の結果、細胞外に存在する抗原が減少するものと考えられる。細胞外に存在する抗原が減少したか否かは、糖鎖受容体を発現する細胞が生体内に存在する場合は、血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等の細胞外に存在する抗原の量を測定することによって、また、糖鎖受容体を発現する細胞が生体外に存在する場合は、生体から取り出された血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等のほか、当該細胞を培養する培養液に存在する抗原の量を測定することによって評価され得る。
　本発明において、「糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　本発明が提供する、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む方法によって、抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能が増加したか否かは、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって当該細胞の細胞外における抗原が消失したか否かを判定することによって確認され得る。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。したがって、細胞外に存在する抗原が減少したかどうかは、例えば、血漿中に存在する抗原の量が、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて減少しているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。
　また、血漿中の抗原の量が減少しているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は生体外のほか、生体内でも行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することも含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
　また、本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する抗原結合ドメインの結合活性が変化するアミノ酸である、抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
抗原結合分子の薬物動態を向上させるための方法
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、抗原結合分子の薬物動態を向上させるための方法を提供する。
　本発明において、「薬物動態の向上」、「薬物動態の改善」または「優れた薬物動態」は、「血漿中（血中）滞留性の向上」、「血漿中（血中）滞留性の改善」、「優れた血漿中（血中）滞留性」、「血漿中（血中）滞留性を長くする」と言い換えることが可能であり、これらの語句は同じ意味で使用される。
　本発明において「薬物動態が向上する」とは、抗原結合分子投与後に抗原が抗原結合分子に結合している時間が延長されたことも含む。抗原結合分子投与後に抗原が抗原結合分子に結合している時間が延長されたか否かは、抗原結合分子に結合していない抗原結合分子非結合型抗原の血漿中濃度を測定し、抗原結合分子非結合型抗原の血漿中濃度、あるいは、総抗原濃度に対する抗原結合分子非結合型抗原濃度の割合が上昇してくるまでの時間により判断することが可能である。
　抗原結合分子非結合型抗原の血漿中濃度、あるいは、総抗原濃度に対する抗原結合分子非結合型抗原濃度の割合は当業者公知の方法で実施することが可能であり、例えば、Pharm　Res.　(2006)　23(1)　95-103において測定されている方法が使用され得る。また、抗原が何らかの機能を生体内で示す場合、抗原が抗原の機能を中和する抗原結合分子（アンタゴニスト分子）と結合しているかどうかは、その抗原の機能が中和されているかどうかで評価することも可能である。抗原の機能が中和されているかどうかは、抗原の機能を反映する何らかの生体内のマーカーを測定することで評価することが可能である。抗原が抗原の機能を活性化する抗原結合分子（アゴニスト分子）と結合しているかどうかは、抗原の機能を反映する何らかの生体内のマーカーを測定することで評価することが可能である。
　非結合型の抗原の血漿中濃度の測定、総抗原量に対する非結合型の抗原量の割合の測定、生体内マーカーの測定などの測定は特に限定されないが、抗原結合分子が投与されてから一定時間が経過した後に行われることが好ましい。本発明において抗原結合分子が投与されてから一定時間が経過した後とは、特に限定されず、投与された抗原結合分子の性質等により当業者が適時決定することが可能であり、例えば抗原結合分子を投与してから１日経過後、抗原結合分子を投与してから３日経過後、抗原結合分子を投与してから７日経過後、抗原結合分子を投与してから１４日経過後、抗原結合分子を投与してから２８日経過後などが挙げられる。
　本発明においては、ヒトにおける薬物動態が向上することが好ましい。ヒトでの血漿中滞留性を測定することが困難である場合には、マウス（例えば、正常マウス、ヒト抗原発現トランスジェニックマウス、ヒトFcRnを発現するトランスジェニックマウス３２系統または２７６系統（Jackson　Laboratories）（Methods　Mol　Biol.　(2010)　602,　93-104）等のトランスジェニックマウス、等）やサル（例えば、カニクイザルなど）での血漿中滞留性にもとづいて、ヒトでの血漿中滞留性が予測され得る。
　また、本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインが含まれる、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度の条件またはpHの条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメインを含む、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
抗原の抗原結合分子からの解離を促進させるための方法
　本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを有する抗原結合分子における、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、細胞外で結合した抗原の抗原結合分子からの解離を促進させるための方法を提供する。
　本発明において抗原が抗原結合分子から解離する箇所は細胞内であればいかなる個所でもよいが、好ましくは早期エンドソーム内である。本発明において、「細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離」とは、細胞外で抗原結合分子に結合した抗原が、当該抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞と生体内または生体外で接触された結果、細胞内に取り込まれた抗原全てが当該細胞内で抗原結合分子から解離する必要はなく、当該細胞内において、抗原結合分子が解離した抗原（または、抗原が解離した抗原結合分子）の割合が高くなっていればよい。
　pH中性域における糖鎖受容体への結合活性を有する本発明の抗原結合分子は糖鎖受容体に結合した後に、エンドサイトーシスによって当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内に取り込まれる。酸性域において糖鎖受容体から遊離した本発明の抗原結合分子は酸性域においてFcRn特にヒトFcRnへ結合することによって、細胞外に再度リサイクルされる。酸性域において抗原結合分子から抗原が解離した上で、細胞外にリサイクルされる本発明の抗原結合分子は、抗原に再度結合することが可能となる。この場合において解離した抗原は細胞内のリソゾーム内で分解を受ける。したがって、抗原結合分子がリサイクルを繰り返すごとに本発明の抗原結合分子に結合した糖鎖受容体を発現する細胞の細胞外に存在する抗原が、糖鎖受容体を発現する細胞内のリソゾームで分解される。こうした抗原の分解の結果、細胞外に存在する抗原が減少するものと考えられる。細胞外に存在する抗原が減少したか否かは、糖鎖受容体を発現する細胞が生体内に存在する場合は、血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等の細胞外に存在する抗原の量を測定することによって、また、糖鎖受容体を発現する細胞が生体外に存在する場合は、生体から取り出された血液、血漿、血清、尿、リンパ液、だ液、涙液等の体液等のほか、当該細胞を培養する培養液に存在する抗原の量を測定することによって評価され得る。
　本発明が提供する、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを有する抗原結合分子における、当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む方法によって、細胞外で結合した抗原の抗原結合分子からの解離が促進されたか否かは、例えば、（１）抗原結合分子および抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過して細胞外にリサイクル（再分泌または再循環ともいう）された、抗原を結合しない抗原結合分子を含む血漿を生体内に戻すいわゆるex　vivoの方法、または、（２）抗原結合分子を生体内に投与する方法、によって当該細胞の細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の細胞内での抗原結合分子からの解離が促進されたか否かを判定することによって確認され得る。また（１）の方法では、抗原結合分子に結合する抗原を含む血漿を生体外にいったん取り出した後に、抗原結合分子および糖鎖受容体を発現する細胞と接触させ一定期間を経過した血漿を生体内に戻す方法も利用され得る。したがって、細胞外に存在する抗原が減少したかどうかは、例えば、血漿中に存在する抗原の量が、当該抗原結合分子を投与しない場合と比べて減少しているかどうか、あるいは、ex　vivoの方法または抗原結合分子の投与によって血漿中の抗原濃度が低減されているかどうか、を測定することによっても確認され得る。
　また、血漿中の抗原の量が減少しているか否かは、上記の（１）および（２）において確認される血漿中の抗原の消失速度が、抗原結合分子の代わりにヒト天然型IgG特にヒト天然型IgG1を用いる方法によって確認される血漿中の抗原の消失速度よりも促進されているか否かを確認することによっても確認され得る。
　本発明において、抗原結合分子に含まれる糖鎖受容体結合ドメインに結合する糖鎖受容体を発現する細胞は、所望の糖鎖受容体が発現する細胞であればどのような細胞も使用され、特定の細胞に制限されない。所望の糖鎖受容体を発現する細胞を特定するために、Human　Protein　Atlas（http://www.proteinatlas.org/）等の公知のデータベースが用いられ得る。また、所望の糖鎖受容体をコードする遺伝子の発現を確認する手法により、また、所望の糖鎖受容体に結合する抗体を用いる免疫学的手法により、本発明の抗原結合分子と接触するために用いられる細胞が当受容体を発現しているか否かが確認され得る。こうした手法もまた公知である。糖鎖受容体を発現する細胞と、抗原結合分子および当該抗原結合分子に結合する抗原との接触は、生体内で行われるため、本発明において、糖鎖受容体を発現する細胞に抗原結合分子を接触させるとは、抗原結合分子を生体に投与することを含む。接触させる時間は、例えば、１分から数週間、３０分から１週間、１時間から３日、２時間から１日の間で適切な時間、すなわち抗原結合分子または当該抗原結合分子に結合する抗原がエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるために必要な時間が適宜採用される。
　たとえば、糖鎖受容体としてアシアログリコプロテインレセプターを発現する細胞としては、肝細胞が使用され得る。また、糖鎖受容体としてマンノースレセプターを発現する細胞としては、血液細胞をはじめとする広範な細胞が使用され得る。
　さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子に含まれる当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性が変化する抗原結合ドメインを含む抗原結合分子に対して細胞外で結合した抗原の細胞内での当該抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、イオン濃度の条件によって抗原に対する結合活性を変化させた抗原結合ドメイン含む抗原結合分子に対して細胞外で結合した抗原の細胞内での当該抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。さらに本発明は、抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対する二つ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させるとともに、抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸がカルシウムイオン濃度またはpHの条件によって抗原に対する結合活性が変化するアミノ酸である抗原結合分子に対して細胞外で結合した抗原の細胞内での当該抗原結合分子からの解離を促進させる方法を提供する。
　本発明において、「イオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させる」方法としては、本明細書中の抗原結合分子の製造方法として記載された複数の方法のうちの一つまたは複数の方法の組合せが適宜使用され得る。
　本明細書において用いる場合、「・・・を含む（comprising）」との表現により表される態様は、「本質的に・・・からなる（essentially　consisting　of）」との表現により表される態様、ならびに「・・・からなる（consisting　of）」との表現により表される態様を包含する。
　本明細書において明示的に引用される全ての特許および参考文献の内容は全て本明細書に参照として取り込まれる。
　以下本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれら実施例に制限されるものではない。
〔実施例１〕糖鎖受容体を用いたpH依存的抗原結合抗体による抗原消失加速効果の向上　可溶型抗原に対する既存の中和抗体を投与すると、抗原が抗体に結合することで血漿中での持続性が高まることが予想される。抗体は一般的に長い半減期（1週間～3週間）を有するが、一方で抗原は一般的に短い半減期（1日以下）を有する。そのため、血漿中で抗体に結合した抗原は、抗原単独で存在する場合に比べて顕著に長い半減期を有するようになる。その結果として、既存の中和抗体を投与することにより、血漿中の抗原濃度の上昇が起こる。このような事例は様々な可溶型抗原を標的とした中和抗体において報告されており、一例を挙げるとIL-6　(J　Immunotoxicol.　2005,　3,　131-9.)、amyloid　beta　(mAbs,　2010,　2:5,　1-13)、MCP-1　(ARTHRITIS　&　RHEUMATISM　2006,　54,2387-92)、hepcidin　(AAPS　J.　2010,　4,　646-57.)　、sIL-6　receptor　(Blood.　2008　Nov　15;112(10):3959-64.)などがある。既存の中和抗体の投与により、ベースラインからおよそ10倍～1000倍程度（上昇の程度は、抗原によって異なる）の血漿中総抗原濃度の上昇が報告されている。ここで、血漿中総抗原濃度とは、血漿中に存在する抗原の総量としての濃度を意味しており、すなわち抗体結合型と抗体非結合型の抗原濃度の和として表される。このような可溶型抗原を標的とした抗体医薬にとっては、血漿中総抗原濃度の上昇が起こることは好ましくない。なぜなら、可溶型抗原を中和するためには、少なくとも血漿中総抗原濃度を上回る血漿中抗体濃度が必要なためである。つまり、血漿中総抗原濃度が10倍～1000倍上昇するということは、それを中和するための血漿中抗体濃度（すなわち抗体投与量）としても、血漿中総抗原濃度の上昇が起こらない場合に比べて10倍～1000倍が必要になることを意味する。一方で、既存の中和抗体に比較して血漿中総抗原濃度を10倍～1000倍低下することができれば、抗体の投与量を同じだけ減らすことが可能である。このように、血漿中から可溶型抗原を消失させて、血漿中総抗原濃度を低下させることができる抗体は、既存の中和抗体に比較して顕著に有用性が高い。
pH依存的ヒトIL-6レセプター結合抗体について
　WO　2009/125825に記載されているH54（配列番号：２６）とL28（配列番号：２７）からなるH54/L28-IgG1はヒト化抗IL-6レセプター抗体であり、VH3-IgG1（配列番号：２８）とVL3-CK（配列番号：２９）からなるGL1-IgG1（WO　2009/125825においては、同分子はFv4-IgG1と記載されている）は、H54/L28-IgG1に対して可溶型ヒトIL-6レセプターへpH依存的に結合する特性（pH7.4において結合し、pH5.8において解離する）を付与したヒト化抗IL-6レセプター抗体である。WO　2009/125825に記載されているマウスのin　vivo試験において、H54/L28-IgG1と抗原である可溶型ヒトIL-6レセプターの混合物を投与した群と比較して、GL1-IgG1と抗原である可溶型ヒトIL-6レセプターの混合物を投与した群において、可溶型ヒトIL-6レセプターの消失を大幅に加速できることが示された。
　通常の可溶型ヒトIL-6レセプターに結合する抗体に結合した可溶型ヒトIL-6レセプターは、抗体とともにFcRnによって血漿中にリサイクルされるのに対して、pH依存的に可溶型ヒトIL-6レセプターに結合する抗体は、エンドソーム内の酸性条件下において抗体に結合した可溶型ヒトIL-6レセプターを解離する。解離した可溶型ヒトIL-6レセプターはライソソームによって分解されるため、可溶型ヒトIL-6レセプターの消失を大幅に加速することが可能となり、さらにpH依存的に可溶型ヒトIL-6レセプターに結合する抗体はFcRnによって血漿中にリサイクルされ、リサイクルされた抗体は再び可溶型ヒトIL-6レセプターに結合することができ、これが繰り返されることによってひとつの抗体分子が複数回繰り返し可溶型ヒトIL-6レセプターに結合することが可能となる（図１）。
IgG抗体のFcRnへの結合に関して
　IgG抗体はFcRnに結合することで長い血漿中滞留性を有する。IgGとFcRnの結合は酸性条件下（pH6.0）においてのみ認められ、中性条件下（pH7.4）においてはほとんど結合は認められない。IgG抗体は非特異的に細胞に取り込まれるが、エンドソーム内の酸性条件下においてエンドソーム内のFcRnに結合することで細胞表面上に戻り、血漿中の中性条件下においてFcRnから解離する。IgGのFc領域に変異を導入し、酸性条件下におけるFcRnへの結合を失わすと、エンドソーム内から血漿中にリサイクルされなくなるため、抗体の血漿中滞留性は著しく損なわれる。IgG抗体の血漿中滞留性を向上させる方法として、酸性条件下におけるFcRnへの結合を向上させる方法が報告されている。IgG抗体のFc領域にアミノ酸置換を導入し、酸性条件下のFcRnへの結合を向上させることで、エンドソーム内から血漿中にリサイクル効率が上昇し、その結果、血漿中滞留性が向上する。
糖鎖受容体を用いたpH依存的抗原結合抗体による抗原消失加速効果の向上
　pH依存的に抗原に結合する抗体は、可溶型の抗原の消失を加速させ血漿中総抗原濃度を低下させることができ、ひとつの抗体分子が複数回繰り返し可溶型の抗原に結合する効果を有することから、極めて有用である。この抗原消失加速効果をさらに向上させる方法として、pH依存的に抗原に結合する抗体に糖鎖を付加させ、抗体に付加した糖鎖と糖鎖受容体の結合が中性条件下（pH7.4））においてのみ認められ、酸性条件下（pH6.0）では解離することで、可溶型の抗原と結合した抗体を糖鎖受容体依存的に細胞内に取りこませ、エンドソーム内では抗体が糖鎖受容体から解離するとともに可溶型の抗原とも解離し、FcRnと結合して再び血漿中にリサイクルされる方法を検証した（図２）。
　上記の方法が有効であるためには、糖鎖と糖鎖受容体の結合、および、抗原と抗体の結合にpH依存性があり、中性条件下において抗原結合分子は糖鎖受容体と抗原に結合し、抗体抗原複合体が糖鎖受容体を介して細胞内に取り込まれ、エンドソームの酸性条件下において抗原結合分子は糖鎖受容体と抗原から解離する必要があると考えられる。
　このような特性を有する抗原と抗体としては、WO　2009/125825に記載されているIL-6レセプターに対する抗体であるFv4-IgG1（本発明ではGL1-IgG1と呼ぶ）が知られている。
　また、このような特性を有する糖鎖と糖鎖受容体として、ガラクトースとアシアログライコプロテインレセプター、および、マンノースとマンノースレセプターが考えられた。糖鎖受容体の一つであるアシアログライコプロテインレセプターとガラクトースの相互作用はpH依存的であり、pH中性域で高い結合活性を示し、pH酸性域で低い結合活性を示すことが知られている（J.　Biol.　Chem.　(1989)　274　(50),　35400-35406）。同様に、糖鎖受容体の一つであるマンノースレセプターとマンノースの相互作用はpH依存的であり、pH中性域で高い結合活性を示し、pH酸性域で低い結合活性を示すことが知られている（J.　Biol.　Chem.　(1994)　269　(45),　28405-28413）。
〔実施例２〕可変領域にガラクトース末端複合型結合型糖鎖を導入したpH依存的結合抗ヒトIL-6レセプター抗体の作成
N結合型糖鎖付加配列を有するpH依存的ヒトIL-6レセプター結合抗体の調製
　VH3-IgG1（配列番号：２８）とVL3-CK（配列番号：２９）からなるGL1-IgG1に対して、N結合型糖鎖付加配列であるAsn-X-Ser/Thrが含まれるよう変異を導入した。このとき、XはProを除くすべてのアミノ酸であればよく、Ser/ThrはSerまたはThrであることを示す。具体的にはIgG1の重鎖定常領域に対してEUナンバリングにおける297番目をAsnからAlaに置換した重鎖定常領域M111（配列番号：３０）を有するVH3-M111（配列番号：３１）を作製し、VH3-M111の重鎖可変領域に対して、kabatナンバリングにおける75番目をLysからAsnに置換したH01-M111（配列番号：３２）を作製した。またVL3-CKの軽鎖可変領域に対して、kabatナンバリングにおける18番目をSerからAsnに置換したL02-CK（配列番号：３３）、20番目をThrからAsnに置換したL03-CK（配列番号：３４）、24番目をGlnからAsnに置換したL04-CK（配列番号：３５）、20番目と24番目をそれぞれThrからAsn　、GlnからAsnにともに置換したL06-CK（配列番号：３６）を作製した。アミノ酸置換の導入方法は参考例１の当業者公知の方法に従って実施した。
　H54（配列番号：２６）とL28（配列番号：２７）からなるH54/L28-IgG1、VH3-IgG1（配列番号：２８）とVL3-CK（配列番号：２９）からなるGL1-IgG1、VH3-M111（配列番号：３１）とVL3-CKからなるGL1-M111、VH3-M111とL02-CK（配列番号：３３）からなるGL2-M111、VH3-M111とL03-CK（配列番号：３４）からなるGL3-M111、VH3-M111とL04-CK（配列番号：３５）からなるGL4-M111、VH3-M111とL06-CK（配列番号：３６）からなるGL5-M111、H01-M111（配列番号：３２）とVL3-CKからなるGL6-M111、H01-M111とL02-CKからなるGL7-M111、H01-M111とL03-CKからなるGL8-M111、H01-M111とL04-CKからなるGL9-M111、H01-M111とL06-CKからなるGL10-M111、VH3-IgG1とL06-CKからなるGL5-IgG1を発現し、精製を行った。発現と精製の方法は参考例２の当業者公知の方法に従って実施した。
　ヒト天然型IgG1は、EUナンバリングにおける297残基目のAsnにN結合型糖鎖が付加している。本実施例は可変領域へのN結合型糖鎖の導入の評価を容易にするため、297番目のAsnをAlaに置換したM111という改変型定常領域を使用した。
還元SDS-PAGEによる糖鎖付加の評価
　N結合型糖鎖付加配列を導入した抗体の糖鎖付加を還元SDS-PAGEにて評価した。6　μgずつ分注したGL1-M111～GL10-M111に、5%　2-mercaptoethanol　(Wako)　を含むTris-Glycine　SDS　Sample　Buffer(2x)　(TEFCO)を添加後、70℃で5分インキュベーションして泳動サンプルを調製した。Precision　plus　blue　standard　(Bio-Rad)を分子量マーカーとし、12%　SDS-PAGE　mini　15well　(TEFCO)を用いて電気泳動後、CBB　Stain　One　(Nacalai　tesque)　によりCBB染色を行った。得られた泳動パターンは図３に示した。
　重鎖、軽差のいずれにも糖鎖が付加していないGL1-M111では、重鎖が50　kDaの分子量マーカーの下端に、軽鎖が25　kDaの分子量マーカーの上端に位置した。軽鎖に糖鎖付加部位を1箇所導入したGL2-M111～GL4-M111は、GL1-M111と比較して軽鎖のバンドが高分子量側にシフトした。軽鎖に糖鎖付加部位を2箇所導入したGL5-M111は、軽鎖のバンドがGL2-M111～GL4-M111と比較してより高分子量側にシフトした。また、重鎖に糖鎖付加部位を1箇所導入したGL6-M111は、GL1-M111と比較して重鎖のバンドが高分子量側にシフトした。
　重鎖と軽鎖に1箇所ずつ、計2箇所の糖鎖付加部位を導入したGL7-M111～GL9-M111は、GL1-M111と比較して重鎖、軽鎖ともに高分子量側にバンドシフトが認められた。重鎖に1箇所と軽鎖に2箇所の計3箇所の糖鎖付加部位を導入したGL10-M111は、重鎖のバンドがGL1-M111より高分子量側に、軽鎖のバンドがGL7-M111～GL9-M111より高分子量側にシフトした。
　これらの結果から、重鎖と軽鎖の両鎖に複数の糖鎖付加部位を同時に導入することが可能であることが示された。
陰イオン交換クロマトグラフィーによるN結合型糖鎖の評価
　Neuraminidaseによるシアル酸除去の前後で陰イオン交換クロマトグラフィーのクロマトグラムの形状変化を評価することで、結合しているN型糖鎖がハイマンノース型糖鎖であるかとうか、および、複合型糖鎖の末端へのシアル酸の結合の有無を評価した。50　mmol/L　Acetate　pH5.0で調製したGL1～GL10にneuraminidase（Roche）を添加し、37℃で一晩静置した。移動相Aとして10　mmol/L　Tris-HCl,　pH7.5、移動相Bとして10　mmo/L　Tris-HCl/150　mmol/L　NaCl,　pH7.5を用いた2液グラジエント法により、TSK-gel　DEAE-NPR（Tosoh）を用いて陰イオン交換クロマトグラフィーを実施した。クロマトグラムは図４に示した。
　糖鎖未付加のGL1-M111はneuraminidase処理前にシングルピークであり、neuraminidase処理に伴うクロマトグラムの変化は認められなかった。一方、糖鎖が付加したGL2-M111～GL10-M111は、neuraminidase処理前にヘテロピークが観察された。neuraminidase処理に伴い検出されるピーク数の減少が観察された。このことは、GL2-M111～GL10-M111の糖鎖末端にはシアル酸が付加していたこと、つまり、GL2-M111～GL10-M111に付加されたN型糖鎖は、高マンノース型ではなくシアル酸が複数結合した複合型糖鎖であることが示された。また、これより、neuraminidase処理をすることで、複合型糖鎖の末端のガラクトースを露出させた分子を調製できることが確認された。
GL5-M1１1の質量分析
　GL5-M111に付加したN結合型糖鎖を質量から推定するため、質量分析を実施した。Neuraminidase処理後のGL5-M11をDTT　(Wako)を用いて還元処理し、Ultimate3000　(Dionex)とLTQ　VELOS　(Thermo　scientific)を用いてRP-LC/ESI-MSを実施した。表１に示した二分岐型N結合型糖鎖のいずれが付加したかを質量から推定し、得られたマスクロマトグラムを図５に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　N結合型糖鎖末端に露出するガラクトース数の増加に伴い、糖鎖受容体を介した認識効率が向上すると考えられる。そこで、二分岐型N結合型糖鎖のうち、G2、G3、G4の付加を観察した。図５に示したように、軽鎖に付加した2箇所の糖鎖がいずれもG2のもの、G2とG3が付加したもの、G3が2個および/またはG2とG4が付加したものが存在した。
neuraminidaseの不活化処理
　N結合型糖鎖末端のシアル酸除去のためにneuraminidase処理をおこなったGL5-M111に含まれるneuraminidaseの不活化を実施した。neuraminidase処理後のGL5-M111（GL5-M111-SA(-)）をProtein　Aにより精製後、60℃で10分のインキュベーションをおこなった（熱処理品）。
陰イオン交換クロマトグラフィーによるneuraminidase活性の評価
　GL5-M111-SA(-)（SA(-)はシアル酸が除去されていることを意味する）ならびに熱処理品にneuraminidase未処理のGL5-M111（GL5-M111-SA(+)）（SA(+)はシアル酸がそのまま残されていることを意味する）を添加して37℃で6時間静置した。N結合型糖鎖の観察時に用いたのと同様の陰イオン交換クロマトグラフィー法により、これらのサンプルを分析した。得られたクロマトグラムは図６に示した。
　図６に示すとおり、GL5-M111-SA(-)にGL5-M111-SA(+)を添加した場合、GL5-M111-SA(+)に由来するヘテロピークに収束が認められた。一方、熱処理品にGL5-M111-SA(+)を添加しても、ピークの収束は認められなかった。このことから、Protein　Aを用いて再精製を行ったのちに熱処理を実施することで、サンプル中に残存するneuraminidaseを不活化することが可能であった。
定常領域をIgG1に変更したサンプルの調製
　GL5に導入した改変により、軽鎖可変領域に二分岐型N結合型糖鎖の付加が可能であることが示された。そこで、定常領域をM111からIgG1に変更したGL1-IgG1ならびにGL5-IgG1を調製した。
還元SDS-PAGEによるIgG1型検体の糖鎖付加の評価
　M111を組み合わせた検体と同様に、GL1-IgG1ならびにGL5-IgG1の還元SDS-PAGEを実施した。得られた泳動パターンは図７に示した。
　図７に示したとおり、GL5-IgG1の軽鎖はGL1-IgG1の軽鎖と比較して高分子量側に大きくシフトしていた。このことから、定常領域の糖鎖は可変領域への糖鎖付加に影響を与えず、GL5-IgG1においても、軽鎖の2箇所にN結合型糖鎖が付加したと考えられた。GL5-M111とGL5-IgG1では軽鎖に同様のN結合型糖鎖が付加したことが陰イオン交換クロマトグラフィーならびに質量分析により観察された（データは示さない）。
ヒトIL-6レセプター（hIL6R）に対する結合評価
　調製したGL1-IgG1-SA、GL1-M111-SA、GL2-M111-SA、GL3-M111-SA、GL4-M111-SA、GL5-M111-SA　、GL6-M111-SA、GL7-M111-SA、GL8-M111-SA、GL9-M111-SA、GL10-M111-SAに対して上述の方法により、neuraminidase処理することで、末端シアル酸を除去し、ガラクトースを末端に露出させたGL1-IgG1-SA　(-)、GL1-M111-SA　(-)、GL2-M111-SA　(-)、GL3-M111-SA　(-)、GL4-M111-SA　(-)、GL5-M111-SA　(-)、GL6-M111-SA　(-)、GL7-M111-SA　(-)、GL8-M111-SA　(-)、GL9-M111-SA　(-)、GL10-M111-SA　(-)を調製した。
　Biacore　T100　(GE　Healthcare)　を用いて、GL1-IgG1-SA　(-)、GL1-M111-SA　(-)、GL2-M111-SA　(-)、GL3-M111-SA　(-)、GL4-M111-SA　(-)、GL5-M111-SA　(-)、GL6-M111-SA　(-)、GL7-M111-SA　(-)、GL8-M111-SA　(-)、GL9-M111-SA　(-)、GL10-M111-SA　(-)、のヒトIL-6レセプターとの抗原抗体反応の速度論的解析を行った。Sensor　chip　CM5　(GE　Healthcare)　上にアミンカップリング法でprotein　A　(Invitrogen)　を適当量固定化し、そこへ目的の抗体をキャプチャーさせた。次に、ヒトIL-6レセプター希釈液とブランクであるランニングバッファーを流速20　μL/minで3分間インジェクトし、センサーチップ上にキャプチャーさせた抗体にヒトIL-6レセプターを相互作用させた。ランニングバッファーには10　mmol/L　ACES、150　mmol/L　NaCl、0.05%　(w/v)　Tween20、pH7.4もしくはpH6.0の2　種類を用い、IL-6Rの希釈にもそれぞれのバッファーを使用した。その後流速20　μL/minで5分間ランニングバッファーを流しIL-6レセプターの解離を観察した後、10　mmol/L　Glycine-HCl,pH1.5を流速30　μL/minで30秒間インジェクトし、センサーチップを再生した。測定は全て37　℃で実施した。測定で得られたセンサーグラムから、カイネティクスパラメーターである結合速度定数　ka　(1/Ms)、および解離速度定数　kd　(1/s)　を算出し、その値をもとに各抗体のヒトIL-6レセプターに対する　KD　(M)　を算出した。各パラメーターの算出にはBiacore　T100　Evaluation　Software　(GE　Healthcare)を用いた。その結果決定されたpH　7.4またはpH　6.0における各抗体のKD値を以下の表２に示した。pH7.4およびpH6.0の両条件において、いずれの抗体もGL1-IgG1-SA　(-)と比べてKD値に大きな差異は認められなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　これらの結果から、効率的にガラクトースを末端に有する複合型糖鎖が導入され、且つ、ヒトIL-6レセプターに対する結合活性およびpH依存性を維持している改変抗体として、軽鎖のKabatナンバリング１８番目および２４番目にN型糖鎖糖鎖付加部位を導入したGL5-M111が選択させた。
　そこで、Biacore　T100　(GE　Healthcare)　を用いて、GL1-M111-SA　(-)、GL5-M111-SA　(-)のヒトIL-6レセプターとの抗原抗体反応の速度論的解析を行った。いずれもシアリダーゼによる処理を行った抗体をサンプルとして測定に用いた。Sensor　chip　CM5　(GE　Healthcare)　上にアミンカップリング法でAnti-Human　IgG　(γ-chain　specific),　F(ab′)2　fragment　antibody　produced　in　goat　(Sigma)　を適当量固定化し、そこへ目的の抗体をキャプチャーさせた。次に、ヒトIL-6レセプター希釈液とブランクであるランニングバッファーを流速20　μL/minで3分間インジェクトし、センサーチップ上にキャプチャーさせた抗体にヒトIL-6レセプターを相互作用させた。ランニングバッファーには10　mmol/L　ACES、150　mmol/L　NaCl、0.05%　(w/v)　Tween20、pH7.4もしくはpH6.0の2　種類を用い、IL-6Rの希釈にもそれぞれのバッファーを使用した。その後流速20　μL/minで5分間ランニングバッファーを流しIL-6レセプターの解離を観察した後、10　mmol/L　Glycine-HCl,　pH1.5を流速30　μL/minで5　秒間インジェクトし、それを5回繰り返すことで、センサーチップを再生した。測定は全て37　℃で実施した。測定で得られたセンサーグラムから、カイネティクスパラメーターである結合速度定数　ka　(1/Ms)、および解離速度定数kd　(1/s)　を算出し、その値をもとに各抗体のヒトIL-6レセプターに対する　KD(M)　を算出した。各パラメーターの算出には　Biacore　T100　Evaluation　Software　(GE　Healthcare)を用いた。その結果決定されたpH　7.4またはpH　6.0における各抗体のKD値を以下の表３に示す。pH7.4およびpH6.0の両条件において、両抗体のKD値に大きな差異は認められなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　続いて、Biacore　T100　(GE　Healthcare)　を用いて、GL1-IgG1-SA　(+)、H54L28-IgG1-SA(+)、GL1-IgG1-SA　(-)、GL5-IgG1-SA　(-)のヒトIL-6レセプターとの抗原抗体反応の速度論的解析を行った。GL1-IgG1-SA　(-)およびGL5-IgG1-SA　(-)はシアリダーゼによる処理を行ったサンプルを測定に用いた。Sensor　chip　CM5　(GE　Healthcare)　上にアミンカップリング法でAnti-Human　IgG　(γ-chain　specific),　F(ab′)2　fragment　antibody　produced　in　goat　(Sigma)　を適当量固定化し、そこへ目的の抗体をキャプチャーさせた。次に、ヒトIL-6レセプター希釈液とブランクであるランニングバッファーを流速20　μL/minで3分間インジェクトし、センサーチップ上にキャプチャーさせた抗体にヒトIL-6レセプターを相互作用させた。ランニングバッファーには10　mmol/L　ACES、150　mmol/L　NaCl、0.05%　(w/v)　Tween20、pH7.4もしくはpH6.0の2　種類を用い、IL-6Rの希釈にもそれぞれのバッファーを使用した。その後流速20　μL/minで5分間ランニングバッファーを流しIL-6レセプターの解離を観察した後、10　mmol/L　Glycine-HCl,　pH1.5を流速30　μL/minで5　秒間インジェクトし、それを5回繰り返すことで、センサーチップを再生した。測定は全て37　℃で実施した。測定で得られたセンサーグラムから、カイネティクスパラメーターである結合速度定数　ka　(1/Ms)、および解離速度定数kd　(1/s)　を算出し、その値をもとに各抗体のヒトIL-6レセプターに対する　KD(M)　を算出した。各パラメーターの算出には　Biacore　T100　Evaluation　Software　(GE　Healthcare)を用いた。その結果決定されたpH　7.4、pH　6.0における各抗体のKD値を以下の表４に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
〔実施例３〕ノーマルマウスを用いた可変領域にガラクトース末端N結合型糖鎖を導入したpH依存的結合抗ヒトIL-6レセプター抗体による抗原消失加速効果の検証
ノーマルマウスを用いたin　vivo試験
　ノーマルマウス（C57BL/6J　mouse、Charles　River　Japan）にhsIL-6R（可溶型ヒトIL-6レセプター：参考例３にて作製）を単独投与もしくはhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体を同時投与した後のhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体の体内動態を評価した。hsIL-6R溶液(5μg/mL)もしくはhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体の混合溶液（それぞれ5μg/mL、0.1　mg/mL）を尾静脈に10　mL/kgで単回投与した。このとき、hsIL-6Rに対して抗ヒトIL-6レセプター抗体は十分量過剰に存在することから、hsIL-6Rはほぼ全て抗体に結合していると考えられる。投与後15分間、7時間、1日間、2日間、3日間、4日間、7日間、14日間、21日間、28日間で採血を行った。採取した血液は直ちに4℃、15,000rpmで15分間遠心分離し、血漿を得た。分離した血漿は、測定を実施するまで-20℃以下に設定された冷凍庫に保存した。抗ヒトIL-6レセプター抗体としては、前述のGL1-M111、GL5-M111、H54/L28-IgG1、GL1-IgG1および、GL5-IgG1を使用した。
ELISA法による血漿中抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度測定
　マウス血漿中の抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度はELISA法にて測定した。まずAnti-Human　IgG(γ-chain　specific)　F(ab')2　Fragment　of　Antibody　(SIGMA)　をNunc-Immuno　Plate,　MaxiSoup　(Nalge　nunc　International)に分注し、4℃で１晩静置しAnti-Human　IgG固相化プレートを作成した。血漿中濃度として0.8、0.4、0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125μg/mLの検量線試料と100倍以上希釈したマウス血漿測定試料を調製し、これら検量線試料および血漿測定試料100μLに20　ng/mLのhsIL-6Rを200μL加え、室温で1時間静置した。その後Anti-Human　IgG固相化プレートに分注しさらに室温で1時間静置した。その後Biotinylated　Anti-human　IL-6　R　Antibody（R&D）を室温で1時間反応させ、さらにStreptavidin-PolyHRP80　(Stereospecific　Detection　Technologies)を室温で1時間反応させ、TMB　One　Component　HRP　Microwell　Substrate　(BioFX　Laboratories)を基質として用い発色反応を行い、1N-Sulfuric　acid（Showa　Chemical）で反応停止後、マイクロプレートリーダーにて450　nmの吸光度を測定した。マウス血漿中濃度は検量線の吸光度から解析ソフトウェアSOFTmax　PRO（Molecular　Devices）を用いて算出した。この方法で測定した静脈内投与後のノーマルマウスにおける血漿中抗体濃度推移を図８あるいは図１０に示した。
電気化学発光法による血漿中hsIL-6R濃度測定
　マウスの血漿中hsIL-6R濃度は電気化学発光法にて測定した。2000、1000、500、250、125、62.5、31.25　pg/mLに調整したhsIL-6R検量線試料および50倍以上希釈したマウス血漿測定試料を調製し、SULFO-TAG　NHS　Ester（Meso　Scale　Discovery）でルテニウム化したMonoclonal　Anti-human　IL-6R　Antibody（R&D）およびBiotinylated　Anti-human　IL-6　R　Antibody　（R&D）およびWT-IgG1溶液を混合し37℃で1晩反応させた。その際の抗ヒトIL-6レセプター抗体として、H(WT)（配列番号：３７）とL(WT)（配列番号：３８）からなるWT-IgG1の終濃度はサンプルに含まれる抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度より過剰の333μg/mLであり、サンプル中のほぼ全てのhsIL-6RをWT-IgG1と結合した状態にすることを目的とした。その後、MA400　PR　Streptavidin　Plate（Meso　Scale　Discovery）に分注した。さらに室温で1時間反応させ洗浄後、Read　Buffer　T(×4）（Meso　Scale　Discovery）を分注し、ただちにSECTOR　PR　400　reader（Meso　Scale　Discovery）で測定を行った。hSIL-6R濃度は検量線のレスポンスから解析ソフトウェアSOFTmax　PRO（Molecular　Devices）を用いて算出した。この方法で測定した静脈内投与後のノーマルマウスにおける血漿中hsIL-6R濃度推移を図９あるいは図１１に示した。
pH依存的ヒトIL-6レセプター結合の効果
　H54/L28-IgG1とpH依存的ヒトIL-6レセプター結合を有するGL1-IgG1のin　vivo試験の結果を比較した。図８に示したとおり、両者の抗体血漿中滞留性はほぼ同等であったが、図９に示したとおり、pH依存的ヒトIL-6レセプター結合を有するGL1-IgG1と同時に投与したhsIL-6Rのほうが、H54/L28-IgG1と同時に投与したhsIL-6Rと比較して、hsIL-6Rの消失が早くなっていることが確認され、pH依存的ヒトIL-6レセプター結合能を付与することによって4日後の血漿中hsIL-6R濃度はそれぞれ約17倍および約34倍低減できることが見出された。
N結合型糖鎖付加の効果
　GL1-M111あるいはGL1-IgG1とN結合型糖鎖を付加したGL5-M111あるいはGL5-IgG1のin　vivo試験結果を比較した。図８あるいは図１０に示したとおり、N結合型糖鎖を付加したGL5-M111あるいはGL5-IgG1の血漿中抗体濃度は、それぞれGL1-M111あるいはGL1-IgG1に比較して、若干低く推移することが分かった。しかしながら、抗体の血漿中半減期は両者に差がないことから、この血漿中抗体濃度推移の差はN結合型糖鎖を付加した抗体において組織への分布容積が大きくなっているためであり、抗体の消失には差がないと考えられた。次に、図９あるいは図１１に示したとおり、N結合型糖鎖を付加したGL5-M111-SA(-)あるいはGL5-IgG1-SA(-)と同時に投与したhsIL-6Rのほうが、N結合型糖鎖が付加されていないGL1-M111-SA(-)あるいはGL1-IgG1-SA(-)と同時に投与したhsIL-6Rと比較して、hsIL-6Rの消失が著しく早くなっていることが確認された。N結合型糖鎖を付与することによって、GL5-M111-SA(-)とGL5-IgG1-SA(-)では2日後の血漿中hsIL-6R濃度をそれぞれ約6倍および約27倍低減できることが見出された。N結合型糖鎖を付与することによって、前述のように抗体の血漿中濃度推移は若干低下したが、それを大幅に上回る血漿中hsIL-6R濃度低減効果を示すことが見出された。これはすなわち、pH依存的に可溶型IL-6レセプターに結合し、さらにN結合型糖鎖を付加した抗体の投与では、N結合型糖鎖が付加されていない抗体に比べ可溶型IL-6レセプターの消失がより加速できたことを意味する。すなわち、このような抗体を生体内に投与することによって、生体内の血漿中の抗原濃度を低減することが可能となる。また、図１０あるいは図１１に示したとおり、GL1-IgG1-SA(+)とGL1-IgG1-SA(-)の血漿中抗体濃度推移が等しく、また、GL1-IgG1-SA(+)と同時に投与したhIL-6Rの消失が、GL1-IgG1-SA(-)と同時に投与したhIL-6Rの消失と同等であることから、重鎖定常領域のEUナンバリングにおいて297番目に付加するN結合型糖鎖に対するシアル酸の除去は、抗体の血漿中濃度推移あるいは可溶型IL-6レセプターの消失に影響を与えないことが示された。
　H54/L28-IgG1-SA(+)のような通常の中和抗体は、抗体を投与すると結合する抗原のクリアランスを低下させ、抗原はより血漿中に長く滞留する。抗体投与によってその作用を中和したい抗原の血漿中滞留性が長くなることは好ましくない。抗原に対する結合にpH依存性（中性条件下で結合し、酸性条件下で解離する）を付与することで、抗原の血漿中滞留性を短くすることが出来る。今回、さらにN結合型糖鎖を付与することで、抗原の血漿中滞留性をさらに短くすることができた。さらに、pH依存的に抗原に結合し中性条件下（pH7.4）におけるFcRnに対する結合を付与した抗体を投与することによって、抗原単独のクリアランスと同等のクリアランスを達成することが可能であることが示された。これまでに抗体投与により抗原単独のクリアランスと同等のクリアランスを達成する方法は知られておらず、本検討で見出された方法は、抗体投与によってその作用を中和したい抗原の血漿中滞留性が長くなることを抑制する方法として極めて有用である。また、本検討により、抗体に抗原との結合に関与しないN結合型糖鎖を付加することに関して、抗原に対してpH依存的に結合する抗体と組み合わせることで、抗原の消失を加速するという利点が初めて見出された。また、抗原との結合に関与しないN結合型糖鎖を付加する残基の箇所はGL5-M111あるいはGL5-IgG1の軽鎖可変領域のkabatナンバリングにおける20番目と24番目に限られないことから、アミノ酸置換の箇所によらず、抗原との結合に関与せずN結合型糖鎖を付加できる箇所であれば、抗原の消失を加速する効果があると考えられる。
〔実施例４〕可変領域にハイマンノース型糖鎖を導入したpH依存的結合抗ヒトIL-6レセプター抗体の作成
ハイマンノース型糖鎖を有するpH依存的ヒトIL-6レセプター結合抗体の調製
　VH3-IgG1（配列番号：２８）とVL3-CK（配列番号：２９）からなるGL1-IgG1、ならびにVH3-IgG1（配列番号：２８）とL06-CK（配列番号：３６）からなるGL5-IgG1を発現し、精製を行った。発現と精製の方法は参考例２の当業者公知の方法に従って実施した。発現ベクターを一過的に導入する際は細胞培養液中に10　μg/mLとなるようキフネンシン(SIGMA)を加え、ハイマンノース型糖鎖を有するGL1-IgG1＿kif+、GL5-IgG1＿kif+を取得した。
還元SDS-PAGEによるIgG1型検体の糖鎖付加の観察
　N結合型糖鎖付加配列を導入した抗体の糖鎖付加を還元SDS-PAGEにて観察した。5　μgずつ分注したGL1-G1＿kif+ならびにGL5-G1＿kif+に、5%2-mercaptoethanol　(Wako)　を含むTris-Glycine　SDS　Sample　Buffer(2x)　(TEFCO)を添加後、70℃で5分インキュベーションして泳動サンプルを調製した。Precision　plus　blue　standard　(Bio-Rad)を分子量マーカーとし、12%　SDS-PAGE　mini　15well　(TEFCO)を用いて電気泳動後、CBB　Stain　One　(Nacalaitesque)　によりCBB染色を行った。得られた泳動パターンは図１２に示した。
　図に示したとおり、GL5-IgG1＿kif+の軽鎖はGL1-IgG1＿kif+の軽鎖と比較して高分子量側に大きくシフトしていた。このことから、kifnensien存在下においても、軽鎖の2箇所にN結合型糖鎖が付加したと考えられた。
GL5-G1＿kif+の質量分析
　GL5-G1＿kif+に付加したN結合型糖鎖を質量から推定するため、質量分析を実施した。Neuraminidase処理後のGL5-M11をDTT　(Wako)を用いて還元処理し、Ultimate3000　(Dionex)とLTQ　VELOS　(Thermo　scientific)を用いてRP-LC/ESI-MSを実施した。表５に示した高マンノースN結合型糖鎖のいずれが付加したかを質量から推定し、得られたマスクロマトグラムを図１３に示した。図１３に示したように、軽鎖に付加した2箇所の糖鎖がMan6とMan9のもの、Man7とMan9のもの、Man8とMan9のもの、ならびにいずれもMan9のものが存在した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
ヒトIL-6レセプター（hIL6R）に対する結合評価
　Biacore　T100　(GE　Healthcare)　を用いて、GL1-IgG1＿kif+、GL5-IgG1＿kif+のヒトIL-6レセプターとの抗原抗体反応の速度論的解析を行った。Sensor　chip　CM5　(GE　Healthcare)　上にアミンカップリング法でAnti-Human　IgG　(γ-chain　specific),　F(ab′)2　fragment　antibody　produced　in　goat　(Sigma)　を適当量固定化し、そこへ目的の抗体をキャプチャーさせた。次に、ヒトIL-6レセプター希釈液とブランクであるランニングバッファーを流速20　μL/minで3分間インジェクトし、センサーチップ上にキャプチャーさせた抗体にヒトIL-6レセプターを相互作用させた。ランニングバッファーには10　mmol/L　ACES、150　mmol/L　NaCl、0.05%　(w/v)　Tween20、pH7.4もしくはpH6.0の2　種類を用い、IL-6Rの希釈にもそれぞれのバッファーを使用した。その後流速20　μL/minで5分間ランニングバッファーを流しIL-6レセプターの解離を観察した後、10　mmol/L　Glycine-HCl,　pH1.5を流速30　μL/minで5　秒間インジェクトし、それを5回繰り返すことで、センサーチップを再生した。測定は全て37　℃で実施した。測定で得られたセンサーグラムから、カイネティクスパラメーターである結合速度定数　ka　(1/Ms)、および解離速度定数kd　(1/s)　を算出し、その値をもとに各抗体のヒトIL-6レセプターに対する　KD(M)　を算出した。各パラメーターの算出には　Biacore　T100　Evaluation　Software　(GE　Healthcare)を用いた。その結果決定されたpH　7.4またはpH　6.0における各抗体のKD値を以下の表６に示した。pH7.4およびpH6.0の両条件において、両抗体のKD値に大きな差異は認められなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
〔実施例４〕ノーマルマウスを用いた可変領域にハイマンノース型糖鎖を導入したpH依存的結合抗ヒトIL-6レセプター抗体による抗原消失加速効果の検証
ノーマルマウスを用いたin　vivo試験
　ノーマルマウス（C57BL/6J　mouse、Charles　River　Japan）にhsIL-6R（可溶型ヒトIL-6レセプター：参考例３にて作製）を単独投与もしくはhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体を同時投与した後のhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体の体内動態を評価した。hsIL-6R溶液(5μg/mL)もしくはhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体の混合溶液（それぞれ5μg/mL、0.1　mg/mL）を尾静脈に10　mL/kgで単回投与した。このとき、hsIL-6Rに対して抗ヒトIL-6レセプター抗体は十分量過剰に存在することから、hsIL-6Rはほぼ全て抗体に結合していると考えられる。投与後15分間、7時間、1日間、2日間、3日間、4日間、7日間で採血を行った。採取した血液は直ちに4℃、15,000　rpmで15分間遠心分離し、血漿を得た。分離した血漿は、測定を実施するまで-20℃以下に設定された冷凍庫に保存した。抗ヒトIL-6レセプター抗体としては、前述のGL1-IgG1＿kif+、GL5-IgG1＿kif+を使用した。
ELISA法による血漿中抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度測定
　マウス血漿中の抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度はELISA法にて測定した。まずAnti-Human　IgG(γ-chain　specific)　F(ab')2　Fragment　of　Antibody　(SIGMA)　をNunc-Immuno　Plate,　MaxiSoup　(Nalge　nunc　International)に分注し、4℃で１晩静置しAnti-Human　IgG固相化プレートを作成した。血漿中濃度として0.8、0.4、0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125μg/mLの検量線試料と100倍以上希釈したマウス血漿測定試料を調製し、これら検量線試料および血漿測定試料100μLに20　ng/mLのhsIL-6Rを200μL加え、室温で1時間静置した。その後Anti-Human　IgG固相化プレートに分注しさらに室温で1時間静置した。その後Biotinylated　Anti-human　IL-6　R　Antibody（R&D）を室温で1時間反応させ、さらにStreptavidin-PolyHRP80　(Stereospecific　Detection　Technologies)を室温で1時間反応させ、TMB　One　Component　HRP　Microwell　Substrate　(BioFX　Laboratories)を基質として用い発色反応を行い、1N-Sulfuric　acid（Showa　Chemical）で反応停止後、マイクロプレートリーダーにて450　nmの吸光度を測定した。マウス血漿中濃度は検量線の吸光度から解析ソフトウェアSOFTmax　PRO（Molecular　Devices）を用いて算出した。この方法で測定した静脈内投与後のノーマルマウスにおける血漿中抗体濃度推移を図１４に示した。
電気化学発光法による血漿中hsIL-6R濃度測定
　マウスの血漿中hsIL-6R濃度は電気化学発光法にて測定した。2000、1000、500、250、125、62.5、31.25　pg/mLに調整したhsIL-6R検量線試料および50倍以上希釈したマウス血漿測定試料を調製し、SULFO-TAG　NHS　Ester（Meso　Scale　Discovery）でルテニウム化したMonoclonal　Anti-human　IL-6R　Antibody（R&D）およびBiotinylated　Anti-human　IL-6　R　Antibody　（R&D）およびWT-IgG1溶液を混合し37℃で1晩反応させた。その際の抗ヒトIL-6レセプター抗体として、H(WT)（配列番号：３７）とL(WT)（配列番号：３８）からなるWT-IgG1の終濃度はサンプルに含まれる抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度より過剰の333μg/mLであり、サンプル中のほぼ全てのhsIL-6RをWT-IgG1と結合した状態にすることを目的とした。その後、MA400　PR　Streptavidin　Plate（Meso　Scale　Discovery）に分注した。さらに室温で1時間反応させ洗浄後、Read　Buffer　T(×4）（Meso　Scale　Discovery）を分注し、ただちにSECTOR　PR　400　reader（Meso　Scale　Discovery）で測定を行った。hSIL-6R濃度は検量線のレスポンスから解析ソフトウェアSOFTmax　PRO（Molecular　Devices）を用いて算出した。この方法で測定した静脈内投与後のノーマルマウスにおける血漿中hsIL-6R濃度推移を図１５に示した。
マンノース型糖鎖付加の効果
　GL1-IgG1＿kif+とマンノース型糖鎖を付加したGL5-IgG1＿kif+のin　vivo試験結果を比較した。図１４に示したとおり、マンノース型糖鎖を付加したGL5-IgG1＿kif+の血漿中抗体濃度は、GL1-IgG1＿kif+に比べ投与後7時間において約3.7倍低下したが、図１５に示すとおり、マンノース型糖鎖を付加したGL5-IgG1＿kif+と同時に投与したhsIL-6Rのほうが、マンノース型糖鎖が付加されていないGL1-IgG1＿kif+と同時に投与したhsIL-6Rと比較して、投与後7時間においての血漿中hsIL-6R濃度を約12.9倍低減できることが見出された。マンノース型糖鎖を付与することによって、前述のように抗体の血漿中濃度は低下したが、それを大幅に上回る血漿中hsIL-6R濃度低減効果を示すことが見出された。これはすなわち、pH依存的に可溶型IL-6レセプターに結合し、さらにマンノース型糖鎖を付加した抗体の投与では、マンノース型糖鎖が付加されていない抗体に比べ可溶型IL-6レセプターの消失がより加速できたことを意味する。すなわち、このような抗体を生体内に投与することによって、生体内の血漿中の抗原濃度を低減することが可能となる。また、図１５に示すとおり、GL5-IgG1＿kif+と同時に投与したhIL-6Rの消失が、hIL-6Rのみを投与したときのhIL-6Rの消失より大きいことから、pH依存的に抗原と結合し、さらにマンノース型糖鎖を付加した抗体の投与により、抗原の血中濃度を、当該抗体投与前の血中濃度より低減できることが示唆された。
〔参考例１〕IgG抗体のアミノ酸置換した発現ベクターの構築
　QuikChange　Site-Directed　Mutagenesis　Kit（Stratagene）を用いて、添付説明書記載の方法で変異体を作製し、得られたプラスミド断片を動物細胞発現ベクターに挿入し、目的のH鎖発現ベクターおよびL鎖発現ベクターを作製した。得られた発現ベクターの塩基配列は当業者公知の方法で決定した。
〔参考例２〕IgG抗体の発現と精製
　作製した発現ベクターをヒト胎児腎癌細胞由来HEK293H株（Invitrogen）、またはFreeStyle293細胞(Invitrogen社)に、一過性に導入し、抗体の発現を行った。得られた培養上清を回収した後、0.22　μmまたはフィルターMILLEX(R)-GV（Millipore）、または0.45　μmフィルターMILLEX(R)-GV（Millipore）を通して培養上清を得た。得られた培養上清から、rProtein　A　Sepharos　Fast　Flow（GEヘルスケア）またはProtein　G　Sepharose　4　Fast　Flow（GEヘルスケア）を用いて当業者公知の方法で、抗体を精製した。精製抗体濃度は、分光光度計を用いて280　nmでの吸光度を測定し、得られた値からPACE等の方法により算出された吸光係数を用いて抗体濃度を算出した（Protein　Science　(1995)　4,　2411-2423）。
〔参考例３〕可溶型ヒトIL-6レセプター（hsIL-6R）の調製
　抗原であるヒトIL-6レセプターの組み換えヒトIL-6レセプターは以下のように調製した。J.　Immunol.　152,　4958-4968　(1994)で報告されているN末端側１番目から357番目のアミノ酸配列からなる可溶型ヒトIL-6レセプター（以下、hsIL-6R）のCHO定常発現株を当業者公知の方法で構築し、培養し、hsIL-6Rを発現させた。得られた培養上清から、Blue　Sepharose　6　FFカラムクロマトグラフィー、ゲルろ過カラムクロマトグラフィーの2工程によりhsIL-6Rを精製した。最終工程においてメインピークとして溶出した画分を最終精製品とした。
〔参考例４〕ファージディスプレイ技術を用いたヒト抗体ライブラリからのCa依存的結合抗体の取得
naiveヒト抗体ファージディスプレイライブラリーの作製
　ヒトPBMCから作成したpolyA　RNAや、市販ヒトpolyA　RNAなどをtemplateとして、（Methods　Mol.　Biol.　(2002)　178,　87-100）に習い、ヒト抗体配列からなるFabドメインを提示する複数のヒト抗体ファージディスプレイライブラリーを構築した。
ビーズパンニングによるライブラリからのCa依存的結合抗体断片の取得
　構築したヒト抗体ファージディスプレイライブラリーからの最初の選抜は、抗原への結合能をもつ抗体断片のみを濃縮、もしくはCa依存的結合能を指標に濃縮させた。Ca依存的結合能をもつ抗体断片を濃縮させる場合には、Caイオン存在下で抗原と結合させた後、EDTAによりCaイオンをキレートすることによりファージの溶出を行った。抗原として、ビオチン標識したヒトIL-6レセプターを用いた。
　上記のように構築したファージディスプレイ用phagemidを保持した大腸菌からファージ産生を行い、得られた培養液を2.5　M　NaCl/10%PEGにより沈殿させた後TBSにて希釈しファージライブラリ液とした。ファージライブラリ液にBSA,　CaCl2を添加し、終濃度4%　BSA,　イオン化カルシウム濃度1.2　mMとなるよう調製した。パンニングは、一般的な方法である磁気ビーズに固定化した抗原を用いたパンニング方法を参考とした（J　Immunol.　Methods.　(2008)　332　(1-2),　2-9、J　Immunol.　Methods.　(2001)　247　(1-2),　191-203、Biotechnol.　Prog.　(2002)　18　(2),　212-220、Mol.　Cell.　Proteomics.　(2003)　2　(2),　61-69）。磁気ビーズにはNeutrAvidin　coated　beads（Sera-Mag　SpeedBeads　NeutrAvidin-coated）もしくはStreptavidin　coated　beads（Dynabeads　M-280　Streptavidin）を用いた。
　具体的には、調製したファージライブラリ液に250　pmolのビオチン標識抗原を加え、室温で60分間抗原と接触させた。BSAでブロッキングした磁気ビーズを加え、室温で15分間結合させた。ビーズを1　mLの1.2　mM　CaCl2/TBS(1.2　mM　CaCl2を含むTBS)にて1回洗浄した。その後、結合能を持つ抗体断片を濃縮する場合には、一般的な方法で溶出を行い、Ca依存的結合能を持つ抗体断片を濃縮する場合には、2　mM　EDTA/TBS(2mM　EDTAを含むTBS)にビーズを懸濁し、ファージを回収した。回収したファージ溶液に、対数増殖期(OD600　0.4-0.7)となった大腸菌株TG1　10　mLを添加し、37℃、1　hr,　緩やかに攪拌培養を行うことにより感染させた。感染させた大腸菌を、225　mm　x　225　mmのプレートへプレーティングした。再度この大腸菌から培養を開始し、ファージの培養を行った。
　2回目以降のパンニングでは、Ca依存的結合能を指標に濃縮を行った。具体的には、調製したファージライブラリー液に40　pmolのビオチン標識抗原を加え、室温で60分間抗原と接触させた。BSAでブロッキングした磁気ビーズを加え、室温で15分間結合させた。ビーズを1　mLの1.2　mM　CaCl2/TBST(1.2　mM　CaCl2,　0.1%　Tween-20を含むTBS)と1.2　mM　CaCl2/TBSにて1回ずつ洗浄した。その後0.1　mLの2　mM　EDTA/TBS(2mM　EDTAを含むTBS)を加えビーズを室温で懸濁し、即座にMagnet　Standを用いビーズを分離し、ファージ溶液を回収した。回収したファージ溶液を、対数増殖期(OD600　0.4-0.7)　となった大腸菌株TG1　10　mLに添加、37℃、1　hr,　緩やかに攪拌培養を行うことにより感染させた。感染させた大腸菌を225　mm　x　225　mmのプレートへプレーティングした。再度この大腸菌から培養を開始し、上記と同様にファージの培養を行い、パンニングを2回繰り返した。
ファージELISAによる評価
　上記の方法により得られた大腸菌シングルコロニーから、（Methods　Mol.　Biol.　(2002)　178,　133-145）に習い、ファージ含有培養上清を回収した。ファージ含有培養上清に終濃度4%BSA,　カルシウムイオン濃度1.2　mMとなるようBSA、　CaCl2を加え、ELISAに供した。ビオチン標識抗原を含むPBS　100μLにてStreptaWell　96マイクロタイタープレート(Roche)を一晩コートした。PBST(0.1%Tween20を含むPBS)にて洗浄し、抗原を除いた後、4%　BSA-TBS　250μLにて1時間以上ブロッキングした。4%　BSA-TBSを除き、ここに調製した培養上清を加え37℃で1時間静置しファージ提示抗体を結合させた。1.2　mM　CaCl2/TBST　(1.2　mM　CaCl2,　0.1%　Tween20を含むTBS)にて洗浄後、1.2　mM　CaCl2/TBSもしくは1　mM　EDTA/TBSを加え37℃で30分間静置しインキュベートした。1.2　mM　CaCl2/TBSTにて洗浄後、4%　BSA,　イオン化カルシウム濃度1.2　mMとしたTBSにて希釈したHRP結合抗M13抗体(Amersham　Parmacia　Biotech)を１時間インキュベートさせた。1.2　mM　CaCl2/TBSTにて洗浄後、TMB　single　solution(ZYMED)で検出し、硫酸の添加により反応を停止した後、450　nmの吸光度を測定した。Ca依存的結合能があると判断した抗体断片に対し、特異的なプライマーを用いて塩基配列解析を行った。
抗体の発現と精製
　ファージELISAにより、Ca依存的結合能があると判断されたクローンについて、動物細胞発現用プラスミドへの導入を行った。抗体の発現は以下の方法を用いて行った。ヒト胎児腎細胞由来FreeStyle　293-F株（Invitrogen）をFreeStyle　293　Expression　Medium培地(Invitrogen)へ懸濁し、1.33　×　106個　/mLの細胞密度で6well　plateの各ウェルへ3　mLずつ蒔きこみ、リポフェクション法により調製したプラスミドを細胞へ導入した。CO2インキュベーター（37度、8%CO2,　90　rpm）で4日間培養を行い、得られた培養上清から、rProtein　A　SepharoseTM　Fast　Flow（Amersham　Biosciences）を用いて当業者公知の方法で抗体を精製した。精製抗体濃度は、分光光度計を用いて280　nmでの吸光度を測定した。得られた値からPACE法により算出された吸光係数を用いて抗体濃度を算出した（Protein　Science　(1995)　4,　2411-2423）。
〔参考例５〕取得された抗体のヒトIL-6レセプターに対するCa依存的結合能の評価
　参考例４で取得された抗体6RL#9-IgG1（重鎖配列番号：７、軽鎖配列番号：３９）、及び、FH4-IgG1（重鎖配列番号：４０、軽鎖配列番号：４１）についてCa依存的結合能があるかどうかを判断するため、Biacore　T100　(GE　Healthcare)　を用いて抗原抗体反応の速度論的解析を行った。上記の重鎖可変領域と（配列番号：９のC末端の2アミノ酸が欠失した）IgG1の定常領域とが融合された重鎖配列が作製された。また、配列番号：４１の軽鎖可変領域と軽鎖κ鎖（配列番号：４２）の定常領域とが融合された軽鎖配列が作製された。Ca依存性を有さない抗体として、WO　2009/125825に記載されているH54/L28-IgG1（重鎖配列番号：２６、軽鎖配列番号：２７）を用いた。高カルシウムイオン濃度として、2　mMを使用し、低カルシウムイオン濃度の条件として3μMを使用した。抗原はヒトIL-6レセプター（IL-6R）を用いた。Sensor　chip　CM4　(GE　Healthcare)　上にアミンカップリング法でprotein　A　(Invitrogen)　を適当量固定化し、そこへ目的の抗体をキャプチャーさせた。ランニングバッファーには10　mmol/L　ACES、150　mmol/L　NaCl、0.05%　(w/v)　Tween20、2　mmol/L　CaCl2、pH7.4もしくは10　mmol/L　ACES、150　mmol/L　NaCl、0.05%　(w/v)Tween20、3　μmol/L　CaCl2、pH7.4の2種類を用いた。測定は全て37℃で実施し、IL-6Rの希釈にもそれぞれのバッファーを使用した。
　H54L28-IgG1に関しては、IL-6R希釈液とブランクであるランニングバッファーを流速20μL/minで3分間インジェクトし、センサーチップ上にキャプチャーさせた抗体にIL-6Rを相互作用させた。その後流速20μL/minで10分間ランニングバッファーを流しIL-6Rの解離を観察した後、10　mmol/L　Glycine-HCl,　pH1.5を流速30μL/minで30秒間インジェクトし、センサーチップを再生した。測定で得られたセンサーグラムから、カイネティクスパラメーターである結合速度定数　ka　(1/Ms)、および解離速度定数　kd　(1/s)　を算出し、その値をもとに各抗体のヒトIL-6レセプターに対する解離定数KD　(M)　を算出した。各パラメーターの算出にはBiacore　T100　Evaluation　Software　(GE　Healthcare)を用いた。
　FH4-IgG1、6RL#9-IgG1に関しては、IL-6R希釈液とブランクであるランニングバッファーを流速5μL/minで15分間インジェクトし、センサーチップ上にキャプチャーさせた抗体にIL-6Rを相互作用させた。その後、10　mmol/L　Glycine-HCl,　pH1.5を流速30μL/minで30秒間インジェクトし、センサーチップを再生した。測定で得られたセンサーグラムに対してsteady　state　affinity　modelを使って解離定数KD　(M)　を算出した。各パラメーターの算出には　Biacore　T100　Evaluation　Software　(GE　Healthcare)を用いた。
　この方法により求めた2　mM　CaCl2存在下における各抗体とIL-6Rとの解離定数KDを表７に示す。H54/L28-IgG1ではCa濃度の違いによるIL-6Rに対する結合の違いは観察されなかったが、FH4-IgG1、6RL#9-IgG1では低濃度のCa条件下では結合の著しい減弱が観察された（図１６、１７、１８）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　H54/L28-IgG1については2　mM　Ca濃度存在下と同様の方法で、Ca濃度が3μMの条件下でのKDを算出することができる。FH4-IgG1、6RL#9-IgG1についてはCa濃度が3μMの場合は、ほぼIL-6Rに対する結合が観察されなかったため、上記の方法によるKDの算出は困難であるが、下記の式１を用いることでKDを予測することが可能である　(Biacore　T100　Software　Handbook,　BR-1006-48,　AE　01/2007)。
〔式１〕
Req=C・Rmax/(KD+C)+RI
　上記式１中の各項目の意味を示す；
Req　(RU):　定常状態結合レベル（Steady　state　binding　levels）
Rmax　(RU):アナライトの表面結合能（Analyte　binding　capacity　of　the　surface）
RI　(RU):　試料中の容積屈折率寄与（Bulk　refractive　index　contribution　in　the　sample）
C　(M):　アナライト濃度（Analyte　concentration）
KD(M):　平衡解離定数（Equilibrium　dissociation　constant）
　この式１を用いて、Ca濃度が3　μmol/Lの場合の予測される各抗体とIL-6Rとの解離定数KDを概算した結果を表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　上記表８中、Req、Rmax、RI、Cは測定結果を基に仮定された値である。
　この結果から、FH4-IgG1、6RL#9-IgG1は、2　mM　CaCl2から3μM　CaCl2にすることで、IL-6Rに対するKDがそれぞれ約60倍、約120倍上昇（60倍、120倍以上アフィニティーが低減）すると予測された。表９にH54/L28-IgG1、FH4-IgG1、6RL#9-IgG1の3種類の抗体の2　mMCaCl2存在下および3　μM　CaCl2存在下におけるKD値、および、KD値のCa依存性についてまとめた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
〔参考例６〕取得された抗体へのカルシウムイオン結合評価
　次に、抗体へのカルシウムイオンの結合の評価を行うために、示差走査型熱量測定(DSC)による熱変性中間温度(Tm値)の評価を行った(MicroCal　VP-Capillary　DSC、MicroCal製)。熱変性中間温度(Tm値)は安定性の指標であり、カルシウムイオンが結合してタンパク質が安定化すると、熱変性中間温度(Tm値)はカルシウムイオンが結合していない場合に比べて高くなる(J.　Biol.　Chem.　(2008)　283　(37)　25140　-　25149)ことを利用して、抗体へのカルシウムイオンの結合の評価を行った。精製した抗体を20　mM　Tris-HCl,　150　mM　NaCl,　2　mM　CaCl2,　pH7.4、または20　mM　Tris-HCl,　150　mM　NaCl,　3μM　CaCl2,　pH7.4の溶液に対して透析（EasySEP,　TOMY）を行った。タンパク質溶液を透析に用いた溶液で0.1　mg/mLに調製し、20℃から115℃まで240℃/hrの昇温速度でDSC測定を行った。得られたDSCの変性曲線を元に各抗体のFabドメインの熱変性中間温度（Tm値）を算出し表１０に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　表１０の結果からカルシウム依存的結合能を示すFH4および6RL#9はカルシウムイオンの濃度によりFabのTm値が変動し、カルシウム依存的結合能を示さないH54/L28はTm値が変動しないことが示された。FH4および6RL#9で示されたFabのTm値の変動は、これらの抗体にカルシウムイオンが結合し、Fab部分が安定化したことを示している。これにより、FH4および6RL#9はカルシウムイオンが結合し、一方でH54/L28はカルシウムイオンが結合していないことが示された。
〔参考例７〕ノーマルマウスを用いたCa依存性結合抗体の抗原の血漿中滞留性への影響の評価
ノーマルマウスを用いたin　vivo試験
　ノーマルマウス（C57BL/6J　mouse、Charles　River　Japan）にhsIL-6R（可溶型ヒトIL-6レセプター：参考例３にて作製）を単独投与もしくはhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体を同時投与した後のhsIL-6Rおよび抗ヒトIL-6レセプター抗体の体内動態を評価した。hsIL-6R溶液(5μg/mL)、もしくは、hsIL-6Rと抗ヒトIL-6レセプター抗体の混合溶液を尾静脈に10　mL/kgで単回投与した。抗ヒトIL-6レセプター抗体としては、上述のH54/L28-IgG1、6RL#9-IgG1、FH4-IgG1を使用した。
　混合溶液中のhsIL-6R濃度は全て5μg/mLであるが、抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度は抗体毎に異なり、H54/L28-IgG1は0.1　mg/mL、6RL#9-IgG1およびFH4-IgG1は10　mg/mL、このとき、hsIL-6Rに対して抗ヒトIL-6レセプター抗体は十分量過剰に存在することから、hsIL-6Rは大部分が抗体に結合していると考えられる。投与後15分間、7時間、1日間、2日間、4日間、7日間、14日間、21日間、28日間で採血を行った。採取した血液は直ちに4℃、12,000　rpmで15分間遠心分離し、血漿を得た。分離した血漿は、測定を実施するまで-20℃以下に設定された冷凍庫に保存した。
ELISA法によるノーマルマウス血漿中の抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度測定
　マウス血漿中の抗ヒトIL-6レセプター抗体濃度はELISA法にて測定した。まずAnti-Human　IgG(γ-chain　specific)　F(ab')2　Fragment　of　Antibody　(SIGMA)　をNunc-Immuno　Plate,　MaxiSoup　(Nalge　nunc　International)に分注し、4℃で１晩静置しAnti-Human　IgG固相化プレートを作成した。血漿中濃度として0.64、0.32、0.16、0.08、0.04、0.02、0.01μg/mLの検量線試料と100倍以上希釈したマウス血漿測定試料を調製し、Anti-Human　IgG固相化プレートに分注して25℃で1時間インキュベーションした。その後Biotinylated　Anti-human　IL-6　R　Antibody（R&D）を25℃で1時間反応させ、さらにStreptavidin-PolyHRP80　(Stereospecific　Detection　Technologies)を25℃で0.5時間反応させ、TMB　One　Component　HRP　Microwell　Substrate　(BioFX　Laboratories)を基質として用い発色反応を行い、1N-Sulfuric　acid（Showa　Chemical）で反応停止後、マイクロプレートリーダーにて450　nmの吸光度を測定した。マウス血漿中濃度は検量線の吸光度から解析ソフトウェアSOFTmax　PRO（Molecular　Devices）を用いて算出した。この方法で測定した静脈内投与後のノーマルマウスにおけるH54/L28-IgG1、6RL#9-IgG1、FH4-IgG1の血漿中抗体濃度推移を図１９に示した。
電気化学発光法による血漿中hsIL-6R濃度測定
　マウスの血漿中hsIL-6R濃度は電気化学発光法にて測定した。2000、1000、500、250、125、62.5、31.25　pg/mLに調整したhsIL-6R検量線試料および50倍以上希釈したマウス血漿測定試料を調製し、SULFO-TAG　NHS　Ester（Meso　Scale　Discovery）でルテニウム化したMonoclonal　Anti-human　IL-6R　Antibody（R&D）およびBiotinylated　Anti-human　IL-6　R　Antibody　（R&D）およびトシリズマブ（重鎖配列番号：３７、軽鎖配列番号：３８）溶液を混合し4℃で1晩反応させた。その際のAssay　bufferには10　mM　EDTAが含まれており、サンプル中のFree　Ca濃度を低下させ、サンプル中のほぼ全てのhsIL-6Rが6RL#9-IgG1もしくはFH4-IgG1から解離し、添加したトシリズマブと結合した状態とすることを目的とした。その後、MA400　PR　Streptavidin　Plate（Meso　Scale　Discovery）に分注した。さらに25℃で1時間反応させ洗浄後、Read　Buffer　T(×4）（Meso　Scale　Discovery）を分注し、ただちにSECTOR　PR　400　reader（Meso　Scale　Discovery）で測定を行った。hSIL-6R濃度は検量線のレスポンスから解析ソフトウェアSOFTmax　PRO（Molecular　Devices）を用いて算出した。この方法で測定した静脈内投与後のノーマルマウスにおける血漿中hsIL-6R濃度推移を図２０に示した。
　結果、hsIL-6R単独は非常に早い消失を示したのに対して、hsIL-6RとCa依存的な結合が無い通常の抗体であるH54/L28-IgG1を同時に投与した場合は、hsIL-6Rの消失を大幅に遅くした。それに対して、hsIL-6Rと100倍以上のCa依存的な結合を有する6RL#9-IgG1あるいはFH4-IgG1を同時に投与した場合は、hsIL-6Rの消失を大幅に加速した。H54/L28-IgG1を同時に投与した場合と比較して、6RL#9-IgG1およびFH4-IgG1を同時に投与した場合は、Day1における血漿中のhsIL-6R濃度をそれぞれ３９倍および２倍低減することが出来た。これよりカルシウム依存的結合抗体が血漿中からの抗原の消失を加速可能であることが確認された。
〔参考例８〕6RL#9抗体のカルシウムイオン結合部位のX線結晶構造解析による同定X線結晶構造解析
　参考例６に示されたように、6RL#9抗体はカルシウムイオンと結合することが熱変性温度Tm値の測定から示唆された。しかし、6RL#9抗体のどの部位がカルシウムイオンと結合しているか予想できなかったため、X線結晶構造解析の手法を用いることによって、カルシウムイオンが相互作用する6RL#9抗体の配列中の残基が特定された。
6RL#9抗体の発現および精製
　X線結晶構造解析に用いるために発現させた6RL#9抗体が精製された。具体的には、参考例５に示されたように6RL#9抗体の重鎖と軽鎖をそれぞれ発現させることが出来るように調製された動物発現用プラスミドが動物細胞に一過的に導入された。最終細胞密度1　x　106細胞/mLとなるようにFreeStyle　293　Expression　Medium培地（Invitrogen）へ懸濁された800　mLのヒト胎児腎細胞由来FreeStyle　293-F株（Invitrogen）に、リポフェクション法により調製されたプラスミドが導入された。プラスミドが導入された細胞はCO2インキュベーター（37℃、8%CO2、90　rpm）中で5日間培養された。rProtein　A　SepharoseTM　Fast　Flow（Amersham　Biosciences）を用いた当業者公知の方法にしたがって、上記のように得られた培養上清から抗体が精製された。分光光度計を用いて精製された抗体溶液の280　nmでの吸光度が測定された。PACE法により算出された吸光係数を用いて測定値から抗体濃度が算出された（Protein　Science　(1995)　4,　2411-2423）。
6RL#9抗体からのFabフラグメントの精製
　分子量分画サイズ10000MWCOの限外ろ過膜　を用いて6RL#9抗体が21　mg/mLまで濃縮された。L-Cystein　4　mM、EDTA　5　mM、20　mMリン酸ナトリウム緩衝液（pH　6.5）を用いて5　mg/mLによって希釈された2.5　mLの当該抗体の試料が調製された。0.125　mgのPapain（RocheApplied　Science）を加えて攪拌された当該試料が35℃にて2時間静置された。静置後、プロテアーゼインヒビターカクテルミニ、EDTAフリー（Roche　Applied　Science）1錠を溶かした10　mLの25　mM　MES　緩衝液（pH6）をさらに当該試料に加え、氷中に静置することによって、Papainによるプロテアーゼ反応が停止された。次に、当該試料が、下流に1　mLサイズのProteinA担体カラムHiTrap　MabSelect　Sure（GE　Healthcare）がタンデムにつながれた25　mM　MES　緩衝液pH6で平衡化された1　mLサイズの陽イオン交換カラムHiTrap　SP　HP（GE　Healthcare）に添加された。同緩衝液中NaCl濃度を300　mMまで直線的に上げて溶出をおこなうことで6RL#9抗体のFabフラグメントの精製画分が得られた。次に、得られた精製画分が5000MWCOの限外ろ過膜　により0.8　mL程度まで濃縮された。50　mM　NaCl　を含む100　mM　HEPES緩衝液（pH　8）で平衡化されたゲルろ過カラムSuperdex　200　10/300　GL（GE　Healthcare）に濃縮液が添加された。結晶化用の精製6RL#9抗体のFabフラグメントが同緩衝液を用いてカラムから溶出された。なお、上記のすべてのカラム操作は6から7.5℃の低温下にて実施された。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下での結晶化
　予め一般的な条件設定で6RL#9　Fabフラグメントの種結晶が得られた。つぎに5　mM　となるようにCaCl2が加えられた精製6RL#9抗体のFabフラグメントが5000MWCOの限外ろ過膜を用いて12　mg/mLに濃縮された。つぎに、ハンギングドロップ蒸気拡散法によって、前記のように濃縮された試料の結晶化が実施された。リザーバー溶液として20-29%のPEG4000を含む100　mM　HEPES緩衝液（pH7.5）が用いられた。カバーグラス上で0.8μlのリザーバー溶液および0.8μlの前記濃縮試料の混合液に対して、29%　PEG4000および5　mM　CaCl2を含む100　mM　HEPES緩衝液（pH7.5）中で破砕された前記種結晶が100-10000倍に希釈された希釈系列の溶液0.2μlを加えることによって結晶化ドロップが調製された。当該結晶化ドロップを20℃に2日から3日静置することによって得られた薄い板状の結晶のX線回折データが測定された。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa非存在下での結晶化
　精製6RL#9抗体のFabフラグメントが5000MWCOの限外ろ過膜　を用いて15　mg/mlに濃縮された。つぎに、ハンギングドロップ蒸気拡散法によって、前記のように濃縮された試料の結晶化が実施された。リザーバー溶液として18-25%のPEG4000を含む100　mM　HEPES緩衝液（pH7.5）が用いられた。カバーグラス上で0.8μlのリザーバー溶液および0.8μlの前記濃縮試料の混合液に対して、25%　PEG4000を含む100　mM　HEPES緩衝液（pH7.5）中で破砕されたCa存在下で得られた6RL#9抗体のFabフラグメントの結晶が100-10000倍に希釈された希釈系列の溶液0.2μlを加えることによって結晶化ドロップが調製された。当該結晶化ドロップを20℃に2日から3日静置することによって得られた薄い板状の結晶のX線回折データが測定された。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下での結晶のX線回折データの測定
　35%　PEG4000および5　mM　CaCl2を含む100mM　HEPES緩衝液（pH7.5）の溶液に浸された6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下で得られた単結晶一つを、微小なナイロンループ付きのピンを用いて外液ごとすくいとることによって、当該単結晶が液体窒素中で凍結された。高エネルギー加速器研究機構の放射光施設フォトンファクトリーのビームラインBL-17Aを用いて、前記の凍結結晶のX線回折データが測定された。なお、測定中は常に-178℃の窒素気流中に凍結結晶を置くことで凍結状態が維持された。ビームラインに備え付けられたCCDディテクタQuantum315r（ADSC）を用い、結晶を1°ずつ回転させながらトータル180枚の回折画像が収集された。格子定数の決定、回折斑点の指数付け、および回折データの処理がプログラムXia2（CCP4　Software　Suite）、XDS　Package（Walfgang　Kabsch）ならびにScala（CCP4　Software　Suite）によって行われた。最終的に分解能2.2Åまでの回折強度データが得られた。本結晶は、空間群P212121に属し、格子定数ａ＝45.47Å、ｂ＝79.86Å、ｃ＝116.25Å、α＝90°、β＝90°、γ＝90°であった。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa非存在下での結晶のX線回折データの測定
　35%　PEG4000を含む100　mM　HEPES緩衝液（pH7.5）の溶液に浸された6RL#9抗体のFabフラグメントのCa非存在下で得られた単結晶一つを、微小なナイロンループ付きのピンを用いて外液ごとすくいとることによって、当該単結晶が液体窒素中で凍結された。高エネルギー加速器研究機構の放射光施設フォトンファクトリーのビームラインBL-5Aを用いて、前記の凍結結晶のX線回折データが測定された。なお、測定中は常に-178℃の窒素気流中に凍結結晶を置くことで凍結状態が維持された。ビームラインに備え付けられたCCDディテクタQuantum210r（ADSC）を用い、結晶を1°ずつ回転させながらトータル180枚の回折画像が収集された。格子定数の決定、回折斑点の指数付け、および回折データの処理がプログラムXia2（CCP4　Software　Suite）、XDS　Package（Walfgang　Kabsch）ならびにScala（CCP4　Software　Suite）によって行われた。最終的に分解能2.3Åまでの回折強度データが得られた。本結晶は、空間群P212121に属し、格子定数ａ＝45.40Å、ｂ＝79.63Å、ｃ＝116.07Å、α＝90°、β＝90°、γ＝90°であり、Ca存在下の結晶と同型であった。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下での結晶の構造解析
　プログラムPhaser（CCP4　Software　Suite）を用いた分子置換法によって、6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下での結晶の構造が決定された。得られた結晶格子の大きさと6RL#9抗体のFabフラグメントの分子量から、非対称単位中の分子数が一個であると予想された。一次配列上の相同性をもとにPDB　code:　1ZA6の構造座標から取り出されたA鎖112-220番およびB鎖116-218番のアミノ酸残基部分が、CLおよびCH1領域の探索用モデル分子とされた。次にPDB　code:　1ZA6の構造座標から取り出されたB鎖1-115番のアミノ酸残基部分が、VH領域の探索用モデル分子とされた。最後にPDB　code　2A9Mの構造座標から取り出された軽鎖3-147番のアミノ酸残基が、VL領域の探索用モデル分子とされた。この順番にしたがい各探索用モデル分子の結晶格子内での向きと位置を回転関数および並進関数から決定することによって、6RL#9抗体のFabフラグメントの初期構造モデルが得られた。当該初期構造モデルに対してVH、VL、CH1、CLの各ドメインを動かす剛体精密化をおこなうことにより、25-3.0Åの反射データに対する結晶学的信頼度因子R値は46.9%、Free　R値は48.6%となった。さらにプログラムRefmac5（CCP4　Software　Suite）を用いた構造精密化と、実験的に決定された構造因子Foとモデルから計算された構造因子Fcおよび位相を用い計算された2Fo-Fc、Fo-Fcを係数とする電子密度マップを参照しながらモデル修正を繰り返しプログラムCoot（Paul　Emsley）上でおこなうことによってモデルの精密化がおこなわれた。最後に2Fo-Fc、Fo-Fcを係数とする電子密度マップをもとにCaイオンおよび水分子をモデルに組み込むことによって、プログラムRefmac5（CCP4　Software　Suite）を用いて精密化がおこなわれた。分解能25-2.2Åの21020個の反射データを用いることによって、最終的に3440原子のモデルに対する結晶学的信頼度因子R値は20.0%、Free　R値は27.9%となった。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa非存在下での結晶のX線回折データの測定
　6RL#9抗体のFabフラグメントのCa非存在下での結晶の構造は、同型であるCa存在下結晶の構造を使って決定された。6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下での結晶の構造座標から水分子とCaイオン分子がのぞかれ、VH、VL、CH1、CLの各ドメインを動かす剛体精密化がおこなわれた。25-3.0Åの反射データに対する結晶学的信頼度因子R値は30.3%、FreeR値は31.7%となった。さらにプログラムRefmac5（CCP4　Software　Suite）を用いた構造精密化と、実験的に決定された構造因子Foとモデルから計算された構造因子Fcおよび位相を用い計算された2Fo-Fc、Fo-Fcを係数とする電子密度マップを参照しながらモデル修正を繰り返しプログラムCoot（Paul　Emsley）上でおこなうことによってモデルの精密化がおこなわれた。最後に2Fo-Fc、Fo-Fcを係数とする電子密度マップをもとに水分子をモデルに組み込むことによって、プログラムRefmac5（CCP4　Software　Suite）を用いて精密化がおこなわれた。分解能25-2.3Åの18357個の反射データを用いることによって、最終的に3351原子のモデルに対する結晶学的信頼度因子R値は20.9%、Free　R値は27.7%となった。
6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在または非存在下での結晶のX線回析データの比較
　6RL#9抗体のFabフラグメントのCa存在下での結晶およびCa非存在下での結晶の構造を比較すると、重鎖CDR3に大きな変化がみられた。X線結晶構造解析で決定された6RL#9抗体のFabフラグメントの重鎖CDR3の構造を図２１に示した。具体的には、Ca存在下での6RL#9抗体のFabフラグメントの結晶では、重鎖CDR3ループ部分の中心部分にカルシウムイオンが存在していた。カルシウムイオンは、重鎖CDR3の95位、96位および100a位（Kabatナンバリング）と相互作用していると考えられた。Ca存在下では、抗原との結合に重要である重鎖CDR3ループがカルシウムと結合することによって安定化し、抗原との結合に最適な構造となっていることが考えられた。抗体の重鎖CDR3にカルシウムが結合する例は今までに報告されておらず、抗体の重鎖CDR3にカルシウムが結合した構造は新規な構造である。
〔参考例９〕ファージディスプレイ技術を用いたヒト抗体ライブラリからのCa依存的にIL-6に結合する抗体の取得
ナイーブヒト抗体ファージディスプレイライブラリの作製
　ヒトPBMCから作成したポリA　RNAや、市販されているヒトポリA　RNAなどを鋳型として当業者に公知な方法にしたがい、互いに異なるヒト抗体配列のFabドメインを提示する複数のファージからなるヒト抗体ファージディスプレイライブラリが構築された。
ビーズパンニングによるライブラリからのCa依存的に抗原に結合する抗体断片の取得
　構築されたナイーブヒト抗体ファージディスプレイライブラリからの最初の選抜は、抗原（IL-6）への結合能をもつ抗体断片のみの濃縮によって実施された。抗原としてビオチン標識されたIL-6が用いられた。構築されたファージディスプレイ用ファージミドを保持した大腸菌からファージ産生が行われた。ファージ産生が行われた大腸菌の培養液に2.5　M　NaCl/10%PEGを添加することによって沈殿させたファージの集団をTBSにて希釈することによってファージライブラリ液が得られた。次に、ファージライブラリ液に終濃度4％BSAおよび1.2mMカルシウムイオン濃度となるようにBSAおよびCaCl2が添加された。パンニング方法として、一般的な方法である磁気ビーズに固定化した抗原を用いたパンニング方法が参照された（J.　Immunol.　Methods.　(2008)　332　(1-2),　2-9、J.　Immunol.　Methods.　(2001)　247　(1-2),　191-203、Biotechnol.　Prog.　(2002)　18　(2)　212-20、Mol.　Cell　Proteomics　(2003)　2　(2),　61-9）。磁気ビーズとして、NeutrAvidin　coated　beads（Sera-Mag　SpeedBeads　NeutrAvidin-coated）もしくはStreptavidin　coated　beads（Dynabeads　M-280　Streptavidin）が用いられた。
　具体的には、調製されたファージライブラリ液に250　pmolのビオチン標識抗原を加えることによって、当該ファージライブラリ液を室温にて60分間抗原と接触させた。BSAでブロッキングされた磁気ビーズが加えられ、抗原とファージとの複合体を磁気ビーズと室温にて15分間結合させた。ビーズは1.2　mM　CaCl2/TBST（1.2　mM　CaCl2を含むTBST）にて3回洗浄された後、1　mLの1.2　mM　CaCl2/TBS（1.2　mM　CaCl2を含むTBS）にてさらに2回洗浄された。その後、0.5　mLの1　mg/mLのトリプシンが加えられたビーズは室温で15分懸濁された後、即座に磁気スタンドを用いてビーズが分離され、ファージ溶液が回収された。回収されたファージ溶液が、対数増殖期（OD600が0.4-0.7）となった10　mLの大腸菌株TG1に添加された。37℃で1時間緩やかに上記大腸菌の攪拌培養を行うことによって、ファージを大腸菌に感染させた。感染させた大腸菌は、225　mm　x　225　mmのプレートへ播種された。次に、播種された大腸菌の培養液からファージを回収することによって、ファージライブラリ液が調製された。
　2回目以降のパンニングでは、Ca依存的結合能を指標にファージの濃縮が行われた。具体的には、調製したファージライブラリ液に40　pmolのビオチン標識抗原を加えることによって、ファージライブラリを室温で60分間抗原と接触させた。BSAでブロッキングされた磁気ビーズが加えられ、抗原とファージとの複合体を磁気ビーズと室温で15分間結合させた。ビーズは1　mLの1.2　mM　CaCl2/TBSTと1.2　mM　CaCl2/TBSにて洗浄された。その後0.1mLの2　mM　EDTA/TBSが加えられたビーズは室温で懸濁された後、即座に磁気スタンドを用いてビーズが分離され、ファージ溶液が回収された。回収されたファージ溶液に100　mg/mLのトリプシン5μLを加えることによって、Fabを提示しないファージのpIIIタンパク質（ヘルパーファージ由来のpIIIタンパク質）が切断され、Fabを提示しないファージの大腸菌に対する感染能を失わせた。トリプシン処理されたファージ溶液から回収されたファージが、対数増殖期（OD600が0.4-0.7）となった10　mLの大腸菌株TG1に添加された。37℃で1時間緩やかに上記大腸菌の攪拌培養を行うことによって、ファージを大腸菌に感染させた。感染させた大腸菌は225　mm　x　225　mmのプレートへ播種された。次に、播種された大腸菌の培養液からファージを回収することによってファージライブラリ液が回収された。Ca依存的結合能を指標とするパンニングが3回繰り返された。
ファージELISAによる評価
　上記の方法によって得られた大腸菌のシングルコロニーから、常法（Methods　Mol.　Biol.　(2002)　178,　133-145）に習い、ファージ含有培養上清が回収された。終濃度4％BSAおよび1.2　mMカルシウムイオン濃度となるようにBSAおよびCaCl2が加えられたファージを含有する培養上清が以下の手順でELISAに供された。StreptaWell　96マイクロタイタープレート（Roche）がビオチン標識抗原を含む100μLのPBSにて一晩コートされた。当該プレートの各ウェルをPBSTにて洗浄することによって抗原が除かれた後、当該ウェルが1時間以上250μLの4％BSA-TBSにてブロッキングされた。4％BSA-TBSが除かれた各ウェルに調製された培養上清が加えられた当該プレートを37℃で1時間静置することによって、ファージを提示する抗体を各ウェルに存在する抗原に結合させた。1.2　mM　CaCl2/TBSTにて洗浄された各ウェルに、1.2　mM　CaCl2/TBSもしくは1　mM　EDTA/TBSが加えられ、当該プレートは37℃で30分間静置しインキュベートされた。1.2　mM　CaCl2/TBSTにて洗浄された後に、終濃度4％のBSAおよび1.2　mMのイオン化カルシウム濃度としたTBSによって希釈されたHRP結合抗M13抗体（Amersham　Pharmacia　Biotech）が各ウェルに添加されたプレートを１時間インキュベートさせた。1.2　mM　CaCl2/TBSTにて洗浄後、TMB　single溶液（ZYMED）が添加された各ウェル中の溶液の発色反応が、硫酸の添加により停止された後、450　nmの吸光度によって当該発色が測定された。
　単離された96クローンを用いてファージELISAを行うことによって、IL-6に対するCa依存的な結合能を有する6KC4-1#85抗体が得られた。上記のファージELISAの結果、Ca依存的な抗原に対する結合能があると判断される抗体断片を鋳型として特異的なプライマーによって増幅された遺伝子の塩基配列解析が行われた。6KC4-1#85抗体の重鎖可変領域の配列を配列番号：８に、および軽鎖可変領域の配列を配列番号：４３に記載した。6KC4-1#85抗体の重鎖可変領域（配列番号：８）をコードするポリヌクレオチドが、PCR法によってIgG1由来配列をコードするポリヌクレオチドと連結されたDNA断片が、動物細胞発現用ベクターに組み込まれ、配列番号：４４で表される重鎖を発現するベクターが構築された。6KC4-1#85抗体の軽鎖可変領域（配列番号：４３）をコードするポリヌクレオチドが、PCR法によって天然型Kappa鎖の定常領域（配列番号：４２）をコードするポリヌクレオチドと連結された配列番号：４５で表された配列をコードするDNA断片が、動物細胞発現用ベクターに組み込まれた。作製された改変体の配列は当業者公知の方法で確認された。作製された改変体の配列は当業者公知の方法で確認された。
抗体の発現と精製
　ファージELISAの結果、Ca依存的な抗原に対する結合能があると判断されたクローン6KC4-1#85が、動物細胞発現用プラスミドへ導入された。抗体の発現は以下の方法を用いて行われた。ヒト胎児腎細胞由来FreeStyle　293-F株（Invitrogen）がFreeStyle　293　Expression　Medium培地（Invitrogen）に懸濁され、1.33　x　106細胞/mLの細胞密度で6ウェルプレートの各ウェルへ3　mLずつ蒔きこま播種された。調製されたプラスミドは、リポフェクション法によって細胞へ導入された。CO2インキュベーター（37度、8%CO2、90　rpm）中で4日間培養が行われるた。rProtein　A　SepharoseTM　Fast　Flow（Amersham　Biosciences）を用いて当業者公知の方法を用いて、上記で得られた培養上清から抗体が精製された。分光光度計を用いて精製された抗体溶液の280　nmでの吸光度が測定された。PACE法により算出された吸光係数を用いることによって、得られた測定値から抗体濃度が算出された（Protein　Science　(1995)　4,　2411-2423）。
〔参考例１０〕6KC4-1#85抗体のカルシウムイオン結合評価６KC4-1#85抗体のカルシウムイオン結合評価
　ヒト抗体ライブラリから取得されたカルシウム依存的抗原結合抗体6KC4-1#85抗体がカルシウムと結合するか評価された。イオン化カルシウム濃度が異なる条件で、測定されるTm値が変動するか否かが参考例６に記載された方法で評価された。
　6KC4-1#85抗体のFabドメインのTm値を表１１に示した。表１１に示されているように、6KC4-1#85抗体のFabドメインのTm値はカルシウムイオンの濃度によって変動していることから、6KC4-1#85抗体がカルシウムと結合することが明らかになった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
6KC4-1#85抗体のカルシウムイオン結合部位の同定
　実施例１０で6KC4-1#85抗体はカルシウムイオンと結合することが示されたが、6KC4-1#85は後述されるhVk5-2配列のようなカルシウム結合モチーフを持たない。そこで、カルシウムイオンが6KC4-1#85抗体のどの残基とカルシウムイオンが結合しているか同定するために、6KC4-1#85抗体のCDRに存在するAsp（D）残基をカルシウムイオンの結合もしくはキレートに関与できないAla（A）残基に置換した改変重鎖（6＿H1-11（配列番号：４６）、6＿H1-12（配列番号：４７）、6＿H1-13（配列番号：４８）、6＿H1-14（配列番号：４９）、6＿H1-15（配列番号：５０））および改変軽鎖（6＿L1-5（配列番号：５１）および6＿L1-6（配列番号：５２））が作製された。改変抗体遺伝子を含む発現ベクターが導入された動物細胞の培養液から、改変抗体が実施例４に記載された方法にしたがって精製された。精製された改変抗体のカルシウム結合が、実施例６に記載された方法にしたがって測定された。測定された結果を表１２に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　表１２に示されているように、6KC4-1#85抗体の重鎖CDR3の95位または101位（Kabatナンバリング）をAla残基に置換することによって6KC4-1#85抗体のカルシウム結合能が失われることから、この残基がカルシウムとの結合に重要であると考えられる。6KC4-1#85抗体の改変抗体のカルシウム結合性から明らかになった6KC4-1#85抗体の重鎖CDR3のループ付け根付近に存在するカルシウム結合モチーフも、本発明の抗原結合分子に含まれる抗原結合ドメインにおけるカルシウム結合モチーフとして使用され得ることが明らかとなった。
〔参考例１１〕カルシウムイオンに結合するヒト生殖細胞系列配列の探索
ヒト生殖細胞系列配列の取得
　ヒト生殖細胞系列配列を含む抗体でカルシウムイオンが結合するものはこれまで報告されていない。そこで、ヒト生殖細胞系列配列を含む抗体がカルシウムイオンと結合するか否かを判定するため、Human　Fetal　Spreen　Poly　RNA（Clontech）から調製されたcDNAを鋳型としてヒト生殖細胞系列配列を含む抗体の生殖細胞系列の配列がクローニングされた。クローニングされたDNA断片は動物細胞発現ベクターに挿入された。得られた発現ベクターの塩基配列が、を当業者公知の方法で決定されし、その配列番号を表１３に示した。配列番号：５３（Vk1）、配列番号：５４（Vk2）、配列番号：５５（Vk3）、配列番号：５６（Vk4）ならびに配列番号：６（Vk5-2）をコードするポリヌクレオチドが、PCR法によって天然型Kappa鎖の定常領域（配列番号：４２）をコードするポリヌクレオチドと連結されたDNA断片が、動物細胞発現用ベクターに組み込まれた。また、配列番号：５７（Vk1）、配列番号：５８（Vk2）、配列番号：５９（Vk3）、配列番号：６０（Vk4）ならびに配列番号：６１（Vk5）をコードするポリヌクレオチドが、PCR法によってIgG1（配列番号：９）のC末端２アミノ酸が欠失したポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと連結されたDNA断片が、動物細胞発現用ベクターに組み込まれた。作製された改変体の配列は当業者公知の方法で確認された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
抗体の発現と精製
　取得された5種類のヒト生殖細胞系列配列を含むDNA断片が挿入された動物細胞発現ベクターが動物細胞へ導入された。抗体の発現は以下の方法を用いて行われた。ヒト胎児腎細胞由来FreeStyle　293-F株（Invitrogen）がFreeStyle　293　Expression　Medium培地（Invitrogen）に懸濁され、1.33　x　106細胞/mLの細胞密度で6ウェルプレートの各ウェルへ3　mLずつ蒔きこまれる播種された。調製されたプラスミドは、リポフェクション法によって細胞へ導入された。CO2インキュベーター（37度、8%CO2、90　rpm）中で4日間培養が行われた。rProtein　A　SepharoseTM　Fast　Flow（Amersham　Biosciences）を用いて当業者公知の方法を用いて、上記で得られた培養上清から抗体が精製された。分光光度計を用いて精製された抗体溶液の280　nmでの吸光度が測定された。PACE法により算出された吸光係数を用いることによって、得られた測定値から抗体濃度が算出された（Protein　Science　(1995)　4,　2411-2423）。
ヒト生殖細胞系列配列を含む抗体のカルシウムイオン結合活性の評価
　精製された抗体のカルシウムイオン結合活性が評価された。精製された抗体が20　mM　Tris-HCl、150　mM　NaCl、2　mM　CaCl2（pH7.4）または20　mM　Tris-HCl、150　mM　NaCl,　3μMCaCl2（pH7.4）の溶液を外液とする透析（EasySEP、TOMY）処理に供された。透析に用いられた溶液を用いておよそ0.1　mg/mLに調製された抗体溶液を被験物質として、20℃から115℃まで240℃/hrの昇温速度でDSC測定が行われた。得られたDSCの変性曲線にもとづいて算出された各抗体のFabドメインの熱変性中間温度（Tm値）を表１４に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
　その結果、hVk1、hVk2、hVk3、hVk4配列を含む抗体のFabドメインのTm値は、当該Fabドメインを含む溶液中のカルシウムイオンの濃度によらず変動しなかった。一方で、hVk5配列を含む抗体のFabドメインのTm値は、当該Fabドメインを含む抗体溶液中のカルシウムイオンの濃度によって変動したことから、hVk5配列がカルシウムイオンと結合することが示された。
〔参考例１２〕ヒトVk5（hVk5）配列の評価
hVk5配列
　Kabatデータベース中には、hVk5配列としてhVk5-2配列のみが登録されている。以下では、hVk5とhVk5-2は同義で扱われる。
糖鎖非付加型hVk5-2配列の構築、発現および精製
　hVk5-2配列は20位（Kabatナンバリング）のアミノ酸にN型糖鎖が付加する配列を有する。タンパク質に付加する糖鎖にはヘテロジェニティーが存在するため、物質の均一性の観点から糖鎖は付加されないほうが望ましい。そこで、20位（Kabatナンバリング）のAsn（N）残基がThr（T）残基に置換された改変体hVk5-2＿L65（配列番号：６２）が作製された。アミノ酸の置換はQuikChange　Site-Directed　Mutagenesis　Kit（Stratagene）を用いる当業者公知の方法で行われた。改変体hVk5-2＿L65をコードするDNAが動物発現用ベクターに組み込まれた。作製された改変体hVk5-2＿L65のDNAが組み込まれた動物発現用ベクターは、重鎖としてCIM＿H（配列番号：６３）が発現するように組み込まれた動物発現用のベクターと、参考例４で記載した方法で共に動物細胞中に導入された。導入された動物細胞中で発現したhVk5-2＿L65　およびCIM＿Hを含む抗体が、参考例４で記載した方法で精製された。
糖鎖非付加型hVk5-2配列を含む抗体の物性評価
　取得された改変配列hVk5-2＿L65を含む抗体が、改変に供されたもとのhVk5-2配列を含む抗体よりも、そのヘテロジェニティーが減少しているか否かが、イオン交換クロマトグラフィーを用いて分析された。イオン交換クロマトグラフィーの方法を表１５に示した。分析の結果、図２２に示したように糖鎖付加部位が改変されたhVk5-2＿L65は、元のhVk5-2配列よりもヘテロジェニティーが減少していることが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
　次に、ヘテロジェニティーが減少したhVk5-2＿L65配列を含む抗体がカルシウムイオンと結合するか否かが、参考例６に記載された方法を用いて評価された。その結果、表１６に示したように、糖鎖付加部位が改変されたhVk5-2＿L65を含む抗体のFabドメインのTm値も、抗体溶液中のカルシウムイオンの濃度の変化によって変動した。すなわち、糖鎖付加部位が改変されたhVk5-2＿L65を含む抗体のFabドメインにカルシウムイオンが結合することが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
〔参考例１３〕hVk5-2配列のCDR配列を含む抗体分子に対するカルシウムイオンの結合活性の評価
hVk5-2配列のCDR配列を含む改変抗体の作製、発現および精製
　hVk5-2＿L65配列はヒトVk5-2配列のフレームワークに存在する糖鎖付加部位のアミノ酸が改変された配列である。参考例１２で糖鎖付加部位を改変してもカルシウムイオンが結合することが示されたが、フレームワーク配列は生殖細胞系列の配列であることが免疫原性の観点から一般的には望ましい。そこで、抗体のフレームワーク配列を、当該抗体に対するカルシウムイオンの結合活性を維持しながら、糖鎖が付加されない生殖細胞系列配列のフレームワーク配列に置換することが可能であるか否かが検討された。
　化学合成されたhVk5-2配列のフレームワーク配列がhVk1、hVk2、hVk3および　hVk4配列に改変された配列（それぞれCaVk1（配列番号：６４）、CaVk2（配列番号：６５）、CaVk3（配列番号：６６）、CaVk4（配列番号：６７）をコードするポリヌクレオチドが、PCR法によって天然型Kappa鎖の定常領域（配列番号：４２）をコードするポリヌクレオチドと連結されたDNA断片が、動物細胞発現用ベクターに組み込まれた。作製された改変体の配列は当業者公知の方法で確認された。上記のように作製された各プラスミドは、CIM＿H（配列番号：６３）をコードするポリヌクレオチドが組み込まれたプラスミドと共に参考例４で記載された方法で動物細胞に導入された。上記のように導入された動物細胞の培養液から、発現した所望の抗体分子が精製された。
hVk5-2配列のCDR配列を含む改変抗体のカルシウムイオン結合活性の評価
　hVk5-2配列以外の生殖細胞系列配列（hVk1、hVk2、hVk3、hVk4）のフレームワーク配列およびhVK5-2配列のCDR配列を含む改変抗体に、カルシウムイオンが結合するか否かが参考例６に記載された方法によって評価された。評価された結果を表１７に示した。各改変抗体のFabドメインのTm値は、抗体溶液中のカルシウムイオン濃度の変化によって変動することが示された。よって、hVk5-2配列のフレームワーク配列以外のフレームワーク配列を含む抗体もカルシウムイオンと結合することが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
　さらに、hVk5-2配列以外の生殖細胞系列配列（hVk1、hVk2、hVk3、hVk4）のフレームワーク配列およびhVK5-2配列のCDR配列を含むように改変された各抗体のFabドメインの熱安定性の指標である熱変性温度（Tm値）は、改変に供されたもとのhVk5-2配列を含む抗体のFabドメインのTm値よりも増加することが明らかになった。この結果から、hVk1、hVk2、hVk3、hVk4のフレームワーク配列およびhVk5-2配列のCDR配列を含む抗体はカルシウムイオンと結合する性質を有する上に、熱安定性の観点でも優れた分子であることが見出された。
〔参考例１４〕ヒト生殖細胞系列hVk5-2配列に存在するカルシウムイオン結合部位の同定hVk5-2配列のCDR配列中の変異部位の設計
　参考例１３に記載されているように、hVk5-2配列のCDR部分が他の生殖細胞系列のフレームワーク配列に導入された軽鎖を含む抗体もカルシウムイオンと結合することが示された。この結果からhVk5-2に存在するカルシウムイオン結合部位はCDRの中に存在することが示唆された。カルシウムイオンと結合する、すなわち、カルシウムイオンをキレートするアミノ酸として、負電荷のアミノ酸もしくは水素結合のアクセプターとなりうるアミノ酸が挙げられる。そこで、hVk5-2配列のCDR配列中に存在するAsp（D）残基またはGlu（E）残基がAla（A）残基に置換された変異hVk5-2配列を含む抗体がカルシウムイオンと結合するか否かが評価された。
hVk5-2配列のAla置換体の作製ならびに抗体の発現および精製
　hVk5-2配列のCDR配列中に存在するAspおよび/　またはGlu残基がAla残基に改変された軽鎖を含む抗体分子が作製された。参考例１２で記載されるように、糖鎖が付加されない改変体hVk5-2＿L65はカルシウムイオン結合を維持していたことから、カルシウムイオン結合性という観点ではhVk5-2配列と同等と考えられる。本参考例ではhVk5-2＿L65をテンプレート配列としてアミノ酸置換が行われた。作製された改変体を表１８に示した。アミノ酸の置換はQuikChange　Site-Directed　Mutagenesis　Kit（Stratagene）、PCRまたはIn　fusionAdvantage　PCR　cloning　kit（TAKARA）等の当業者公知の方法によって行われ、アミノ酸が置換された改変軽鎖の発現ベクターが構築された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
　得られた発現ベクターの塩基配列は当業者公知の方法で決定された。作製された改変軽鎖の発現ベクターを重鎖CIM＿H（配列番号：６３）の発現ベクターと共に、ヒト胎児腎癌細胞由来HEK293H株（Invitrogen）、またはFreeStyle293細胞（Invitrogen）に一過性に導入することによって、抗体を発現させた。得られた培養上清から、rProtein　A　SepharoseTM　Fast　Flow（GEヘルスケア）を用いて当業者公知の方法で、抗体が精製された。精製された抗体溶液の280　nmでの吸光度が、分光光度計を用いて測定された。PACE法により算出された吸光係数を用いることによって、得られた測定値から抗体濃度が算出された（Protein　Science　(1995)　4,　2411-2423）。
hVk5-2配列のAla置換体を含む抗体のカルシウムイオン結合活性評価
　得られた精製抗体がカルシウムイオンと結合するか否かが参考例１６に記載された方法によって判定された。その結果を表１９に示した。hVk5-2配列のCDR配列中に存在するAspまたはGlu残基をカルシウムイオンの結合もしくはキレートに関与できないAla残基に置換することによって、抗体溶液のカルシウムイオン濃度の変化によってそのFabドメインのTm値が変動しない抗体が存在した。Ala置換によってTm値が変動しない置換部位（32位および92位（Kabatナンバリング））はカルシウムイオンと抗体の結合に特に重要であることが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
〔参考例１５〕カルシウムイオン結合モチーフを有するhVk1配列を含む抗体のカルシウムイオン結合活性の評価
カルシウムイオン結合モチーフを有するhVk1配列の作製ならびに抗体の発現および精製
　参考例１４で記載されたAla置換体のカルシウムの結合活性の結果から、hVk5-2配列のCDR配列の中でAspやGlu残基がカルシウム結合に重要であることが示された。そこで、30位、31位、32位、50位および92位（Kabatナンバリング）の残基のみを他の生殖細胞系列の可変領域配列に導入してもカルシウムイオンと結合できるか否かが評価された。具体的には、ヒト生殖細胞系配列であるhVk1配列の30位、31位、32位、50位および92位（Kabatナンバリング）の残基がhVk5-2配列の30位、31位、32位、50位および92位（Kabatナンバリング）の残基に置換された改変体LfVk1＿Ca（配列番号：７６）が作製された。すなわち、hVk5-2配列中のこれらの5残基のみが導入されたhVk1配列を含む抗体がカルシウムと結合できるか否かが判定された。改変体の作製は参考例４と同様に行われた。得られた軽鎖改変体LfVk1＿Caおよび軽鎖hVk1配列を含むLfVk1（配列番号：７７）を、重鎖CIM＿H（配列番号：６３）と共に発現させた。抗体の発現および精製は実施例１４と同様の方法で実施された。
カルシウムイオン結合モチーフを有するヒトhVk1配列を含む抗体のカルシウムイオン結合活性の評価
　上記のように得られた精製抗体がカルシウムイオンと結合するか否かが参考例６に記載された方法で判定された。その結果を表２０に示した。hVk1配列を有するLfVk1を含む抗体のFabドメインのTm値は抗体溶液中のカルシウムの濃度の変化によっては変動しない一方で、LfVk1＿Caを含む抗体配列の、Tm値は、抗体溶液中のカルシウムの濃度の変化によって1℃以上変化したことから、LfVk1＿Caを含む抗体がカルシウムと結合することが示された。上記の結果から、カルシウムイオンの結合には、hVk5-2のCDR配列がすべて必要ではなく、LfVk1＿Ca配列を構築する際に導入された残基のみでも十分であることが示された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
〔参考例１６〕hVk5-2バリアント配列のカルシウム結合評価
　Vk5-2（配列番号：６）のほかにVk5-2に分類されるVk5-2バリアント１（配列番号：７８）およびVk5-2バリアント２（配列番号：７９）が得られた。これらのバリアントについてもカルシウム結合評価が行われた。Vk5-2、Vk5-2バリアント１およびVk5-2バリアント２のDNA断片がそれぞれ動物細胞用発現ベクターに組み込まれた。得られた発現ベクターの塩基配列は当業者公知の方法で決定された。Vk5-2、Vk5-2バリアント１およびVk5-2バリアント２のDNA断片がそれぞれ組み込まれた動物細胞用発現ベクターは、重鎖としてCIM＿H（配列番号：６３）が発現するように組み込まれた動物発現用のベクターと、参考例１３で記載された方法で共に動物細胞中に導入され、抗体が精製された。精製された抗体のカルシウムイオン結合活性が評価された。精製された抗体が20　mM　Tris-HCl、150　mMNaCl、2　mM　CaCl2（pH7.5）または20　mM　Tris-HCl、150　mM　NaCl（pH7.5）の溶液（表２１ではカルシウムイオン濃度0mMと表記）を外液とする透析（EasySEP、TOMY）処理に供された。透析に用いられた溶液を用いておよそ0.1　mg/mLに調製された抗体溶液を被験物質として、20℃から115℃まで240℃/hrの昇温速度でDSC測定が行われた。得られたDSCの変性曲線にもとづいて算出された各抗体のFabドメインの熱変性中間温度（Tm値）を表２１に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
　その結果、Vk5-2、Vk5-2バリアント１およびVk5-2バリアント２の配列を含む抗体のFabドメインのTm値は、当該Fabドメインを含む抗体溶液中のカルシウムイオンの濃度によって変動したことから、Vk5-2に分類される配列を持つ抗体はカルシウムイオンと結合することが示された。Vk5-2バリアント１およびVk5-2バリアント２の配列中に存在するカルシウム結合モチーフも本発明のイオン濃度の条件によって抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性を変化させるカルシウム結合モチーフとして好適に使用され得ることが明らかとなった。

Claims (92)

  1. 以下の工程を含む抗原結合分子の製造方法；
    (a)　抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインを含む抗原結合分子のポリペプチド配列を提供する工程、
    (b)　当該ポリペプチド配列中における糖鎖受容体結合ドメインのモチーフの候補となるアミノ酸配列を同定する工程、
    (c)　(b)で同定されたアミノ酸配列と少なくとも１つのアミノ酸が異なるアミノ酸配列を含む糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを設計する工程、
    (d)　(c)で設計された糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを含む抗原結合分子のポリペプチドをコードする遺伝子を作製する工程、
    (e)　(d)で得られた遺伝子によって形質転換された宿主細胞の培養液から抗原結合分子を回収する工程。
  2. (e)で得られた抗原結合分子に対してさらに酵素を用いて処理する工程を含む請求項１の製造方法。
  3. 前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする請求項１または２に記載の製造方法。
  4. 前記イオン濃度の条件がpHの条件である請求項３に記載の製造方法。
  5. 前記抗原結合ドメインが、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い請求項４に記載の製造方法。
  6. 前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸を側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸で置換するか又は抗原結合ドメインに側鎖のpKaが4.0-8.0である少なくとも１つのアミノ酸を挿入することにより、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い抗原結合ドメインを提供することを含む、請求項５に記載の方法。
  7. 前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である請求項３に記載の製造方法。
  8. 前記抗原結合ドメインが、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い請求項７に記載の製造方法。
  9. 前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸をカルシウム結合モチーフで置換するか又は抗原結合ドメインにカルシウム結合モチーフを挿入することにより、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い抗原結合ドメインを提供することを含む、請求項８に記載の方法。
  10. 前記抗原結合ドメインが抗体の可変領域を含む請求項１から９のいずれかに記載の方法。
  11. 前記FcRn結合ドメインが抗体のFc領域を含む請求項１から１０のいずれかに記載の方法。
  12. 前記抗体がIgG抗体である請求項１１に記載の方法。
  13. 前記IgG抗体がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4のいずれかである請求項１２に記載の方法。
  14. 前記糖鎖受容体結合ドメインの糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする請求項１から１２のいずれかに記載の方法。
  15. 前記イオン濃度の条件がpHの条件である請求項１４に記載の方法。
  16. 前記糖鎖受容体結合ドメインの、pH酸性域の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い請求項１から１５のいずれかに記載の方法。
  17. 前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である請求項１４に記載の方法。
  18. 前記糖鎖受容体結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い請求項１７に記載の方法。
  19. 前記糖鎖受容体結合ドメインが糖鎖である請求項１から１８のいずれかに記載の方法。
  20. 前記糖鎖がO結合型糖鎖である請求項１９に記載の方法。
  21. 前記糖鎖がN結合型糖鎖である請求項１９に記載の方法。
  22. 前記糖鎖受容体結合ドメインのモチーフを設計することが、N結合型糖鎖が付加するモチーフを設計することを含む請求項２１に記載の方法。
  23. 前記N結合型糖鎖の末端がガラクトースを含む請求項２１または２２に記載の方法。
  24. 前記N結合型糖鎖の末端が３つ以上のガラクトースを含む請求項２３に記載の方法。
  25. 前記糖鎖受容体がアシアログライコプロテインレセプターである請求項２１から２４のいずれかに記載の方法。
  26. 前記N結合型糖鎖の末端がマンノースを含む請求項２１または２２に記載の方法。
  27. 前記糖鎖受容体がマンノースレセプターである請求項２６に記載の方法。
  28. 請求項１から２７のいずれかに記載の方法により作製された抗原結合分子。
  29. FcRn結合ドメイン、抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化する抗原結合ドメイン、および糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化するひとつ以上の糖鎖受容体結合ドメインを含む抗原結合分子。
  30. 前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がpHの条件によって変化する請求項２９に記載の抗原結合分子。
  31. 前記抗原結合ドメインの、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い請求項３０に記載の抗原結合分子。
  32. 前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸に少なくとも１つの側鎖のpKaが4.0-8.0であるアミノ酸が含まれている、請求項３１に記載の抗原結合分子。
  33. 前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がカルシウムイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする請求項２９に記載の抗原結合分子。
  34. 前記抗原結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い請求項３３に記載の抗原結合分子。
  35. 前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸にカルシウム結合モチーフが含まれる、請求項３４に記載の抗原結合分子。
  36. 前記抗原結合ドメインが抗体の可変領域を含む請求項２９から３５のいずれかに記載の抗原結合分子。
  37. 前記FcRn結合ドメインが抗体のFc領域を含む請求項２９から３６のいずれかに記載の抗原結合分子。
  38. 前記抗体がIgG抗体である請求項３７に記載の抗原結合分子。
  39. 前記IgG抗体がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4のいずれかである請求項３８に記載の抗原結合分子。
  40. 前記糖鎖受容体結合ドメインの糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする請求項２９から３９のいずれかに記載の抗原結合分子。
  41. 前記イオン濃度の条件がpHの条件である請求項４０に記載の抗原結合分子。
  42. 前記糖鎖受容体結合ドメインの、pH酸性域の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い請求項４１に記載の抗原結合分子。
  43. 前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である請求項４０に記載の抗原結合分子。
  44. 前記糖鎖受容体結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い請求項４３に記載の抗原結合分子。
  45. 前記糖鎖受容体結合ドメインが糖鎖である請求項２９から４４のいずれかに記載の抗原結合分子。
  46. 前記糖鎖がO結合型糖鎖またはN結合型糖鎖である請求項４５に記載の抗原結合分子。
  47. 前記糖鎖受容体結合ドメインにN結合型糖鎖が結合するモチーフが含まれる請求項４６に記載の抗原結合分子。
  48. 前記N結合型糖鎖の末端がガラクトースを含む請求項４６または４７に記載の抗原結合分子。
  49. 前記N結合型糖鎖の末端が3つ以上の末端のガラクトースを含む請求項４８に記載の抗原結合分子。
  50. 前記糖鎖受容体がアシアログライコプロテインレセプターである請求項４７から４９のいずれかに記載の抗原結合分子。
  51. 前記N結合型糖鎖の末端がマンノースを含む、請求項４６または４７に記載の抗原結合分子。
  52. 前記糖鎖受容体がマンノースレセプターである請求項４６または４７に記載の抗原結合分子。
  53. 前記抗原結合分子が抗体であることを特徴とする、請求項２８から５２に記載の抗原結合分子。
  54. 前記糖鎖受容体結合ドメインが抗原結合ドメインに含まれる請求項２８から５３のいずれかに記載の抗原結合分子。
  55. 前記糖鎖受容体結合ドメインがFcRn結合ドメインに含まれる、請求項２８から５３のいずれかに記載の抗原結合分子。
  56. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を含む医薬組成物。
  57. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子を当該細胞の細胞内へ取り込ませる方法。
  58. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、抗原結合分子に結合した抗原を当該細胞の細胞内へ取り込ませる方法。
  59. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させる方法。
  60. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、細胞外に存在する抗原を減少させる方法。
  61. 細胞外が血漿である請求項５８に記載の方法。
  62. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内で接触させることを含む、抗原結合分子の薬物動態を向上させる方法。
  63. 請求項２８から５５のいずれかに記載の抗原結合分子を、糖鎖受容体を発現する細胞に生体内または生体外で接触させることを含む、細胞の細胞外で抗原結合分子に結合した抗原の抗原結合分子からの解離を促進させる方法。
  64. 抗原結合ドメイン、FcRn結合ドメインと糖鎖受容体に対するひとつ以上の結合ドメインを含む抗原結合分子における当該糖鎖受容体に対する結合ドメインの数を増加させることを含む、下記：
    (i)　生体内または生体外における当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内への抗原結合分子の取込を促進するための方法
    (ii)　生体内または生体外における当該糖鎖受容体を発現する細胞の細胞内への抗原結合分子に結合した抗原の取込を促進するための方法
    (iii)　生体内または生体外において一分子当りの抗原結合分子が結合する抗原の数を増加させるための方法
    (iv)　抗原結合分子の生体内または生体外における抗原の消失能を増加させるための方法
    (v)　抗原結合分子の薬物動態を向上させるための方法、または
    (vi)　細胞外で結合した抗原の抗原結合分子からの解離を促進させるための方法
    のいずれかから選択される方法。
  65. 前記抗原結合分子の抗原に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化する請求項６４に記載の方法。
  66. 前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がpHの条件によって変化する請求項６４に記載の方法。
  67. 前記抗原結合ドメインの、pH酸性域の条件下での抗原に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い請求項６６に記載の方法。
  68. 前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸に側鎖のpKaが4.0-8.0である少なくとも１つのアミノ酸含まれている請求項６７に記載の方法。
  69. 前記抗原結合ドメインの抗原に対する結合活性がカルシウムイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする請求項６４に記載の方法。
  70. 前記抗原結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での抗原に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該抗原に対する結合活性が高い請求項６９に記載の方法。
  71. 前記抗原結合ドメインの少なくとも１つのアミノ酸にカルシウム結合モチーフが含まれる、請求項７０に記載の方法。
  72. 前記抗原結合ドメインが抗体の可変領域を含む請求項６４から７１のいずれかに記載の方法。
  73. 前記FcRn結合ドメインが抗体のFc領域を含む請求項６４から７２のいずれかに記載の方法。
  74. 前記抗体がIgG抗体である請求項７３に記載の方法。
  75. 前記IgG抗体がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4のいずれかである請求項７４に記載の方法。
  76. 前記糖鎖受容体結合ドメインの糖鎖受容体に対する結合活性がイオン濃度の条件によって変化することを特徴とする請求項６４から７５のいずれかに記載の方法。
  77. 前記イオン濃度の条件がpHの条件である請求項７６に記載の方法。
  78. 前記糖鎖受容体結合ドメインの、pH酸性域の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりもpH中性域の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い請求項７６に記載の方法。
  79. 前記イオン濃度の条件がカルシウムイオン濃度の条件である請求項７６に記載の方法。
  80. 前記糖鎖受容体結合ドメインの、低カルシウムイオン濃度の条件下での糖鎖受容体に対する結合活性よりも高カルシウムイオン濃度の条件下での当該糖鎖受容体に対する結合活性が高い請求項７９に記載の方法。
  81. 前記糖鎖受容体結合ドメインが糖鎖である請求項６４から８０のいずれかに記載の方法。
  82. 前記糖鎖がO結合型糖鎖である請求項８１に記載の方法。
  83. 前記糖鎖がN結合型糖鎖である請求項８１に記載の方法。
  84. 前記糖鎖受容体結合ドメインにN結合型糖鎖が結合するモチーフが含まれる請求項８３に記載の方法。
  85. 前記N結合型糖鎖の末端がガラクトースを含む請求項８３または８４に記載の方法。
  86. 前記N結合型糖鎖の末端が3つ以上の末端のガラクトースを含む請求項８５に記載の方法。
  87. 前記糖鎖受容体がアシアログライコプロテインレセプターである請求項８４から８６のいずれかに記載の方法。
  88. 前記N結合型糖鎖の末端がマンノースを含む、請求項８３または８４に記載の方法。
  89. 前記糖鎖受容体がマンノースレセプターである請求項８３または８４に記載の方法。
  90. 前記抗原結合分子が抗体であることを特徴とする、請求項６４から８９に記載の方法。
  91. 前記糖鎖受容体結合ドメインが抗原結合ドメインに含まれる請求項６４から９０のいずれかに記載の方法。
  92. Fc領域に前記糖鎖受容体結合ドメインがFcRn結合ドメインに含まれる請求項６４から９０のいずれかに記載の方法。
     
     
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