JP2008120828A - 抗グリピカン３抗体を含む細胞増殖抑制剤 - Google Patents

Abstract

【課題】 新規な細胞増殖抑制剤を提供すること。
【解決手段】 抗グリピカン３抗体を有効成分として含有する治療剤、ならびに抗グリピカン３抗体及び医薬的に許容される担体又は添加物を含む治療用製剤が開示される。好ましくは本発明の治療用製剤は細胞増殖抑制剤である。また好ましくは、抗グリピカン３抗体はモノクローナル抗体である。また好ましくは、抗グリピカン３抗体は細胞障害活性を有する。
【選択図】 なし

Description

本発明は、抗グリピカン３抗体を有効成分として含有する細胞増殖抑制剤に関する。

細胞表面上に存在するヘパラン硫酸プロテオグリカンの新しいファミリーとしてグリピカンファミリーの存在が報告されている。現在までのところ、グリピカンファミリーのメンバーとして、５種類のグリピカン（グリピカン１、グリピカン２、グリピカン３、グリピカン４およびグリピカン５）が存在することが報告されている。このファミリーのメンバーは、均一なサイズ（約６０ｋＤａ）のコアタンパク質を持ち、特異的でよく保持されたシステインの配列を共有しており、グリコシルフォスファチジルイノシトール（ＧＰＩ）アンカーにより細胞膜に結合している。

中枢神経の発達における細胞分裂パターンが異常なショウジョウバエメラノガスター（Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ ｍｅｌａｎｏｇａｓｔｅｒ）変異体の遺伝子スクリーニングによ
り、Ｄａｌｌｙ（ｄｉｖｉｓｉｏｎ ａｂｎｏｒｍａｌｌｙ ｄｅｌａｙｅｄ）遺伝子が同定されており、ＤａｌｌｙのｃＤＮＡは、グリピカンの全ての特徴を含んでいる脊椎動物の膜型プロテオグリカン（ＧＲＩＰｓ）と相同配列（２４〜２６％相同）を示す産物をコードするオープンリーディングフレーム（ＯＲＦ）を表していることがわかっている。その後、ｄａｌｌｙがｄｐｐ（ｄｅｃａｐｅｎｔａｐｌｅｇｉａ）レセプター機構を調節する役割を持つことが示唆されており、このことから哺乳動物のグリピカンがＴＧＦとＢＭＰのシグナル伝達を調節している可能性を示唆している。すなわち、グリピカンがヘパリン結合性増殖因子（ＥＧＦ、ＰＤＧＦ、ＢＭＰ２、ＦＧＦ'ｓ）等）のいくつかの共同レ
セプターとして機能している可能性が示唆されていた。

グリピカン３は、ラットの小腸から発生的に調節されている転写物として分離され（Ｆｉｌｍｕｓ，Ｊ．，Ｃｈｕｒｃｈ，Ｊ．Ｇ．，ａｎｄ Ｂｕｉｃｋ，Ｒ．ｎ．（１９８８
）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．８，４２４３−４２４９）、後にグリピカンファミリー
の、分子量６９ｋＤａのコアタンパク質を持った、ＧＰＩ−結合型のヘパラン硫酸プロテオグリカン、ＯＣＴ−５として同定された（Ｆｉｌｍｕｓ，Ｊ．，Ｓｈｉ，Ｗ．，Ｗｏｎｇ，Ｚ．−Ｍ．，ａｎｄ Ｗｏｎｇ，Ｍ．Ｊ．（１９９５）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．３１１
，５６１−５６５）。ヒトにおいても、ヒト胃癌細胞株よりグリピカン３をコードする遺伝子が、ＭＸＲ−７として単離されている（Ｈｅｒｍａｎｎ Ｌａｇｅ ｅｔ ａｌ．，Ｇ
ｅｎｅ １８８（１９９７）１５１−１５６）。グリピカン３はインスリン様増殖因子−
２とタンパク−タンパク複合体を形成し、この増殖因子の活動を調節することが報告されている（Ｐｉｌｉａ，Ｇ．ｅｔ ａｌ，（１９９６）Ｎａｔ．Ｇｅｎｅｔ．１２，２４１
−２４７）。この報告は、グリピカン３が必ずしもヘパラン硫酸鎖によって増殖因子と相互作用しているのではないことを示唆している。

また、グリピカン３について肝細胞癌マーカーとして利用できる可能性の示唆は報告されているが（Ｈｅｙ−Ｃｈｉ Ｈｓｕ ｅｔ ａｌ．，ＣＡＮＣＥＲ ＲＥＳＥＡＲＣＨ ５
７，５１７９−５１８４（１９９７））、グリピカン３と癌細胞増殖のはっきりとした関係についての知見はない。

さらに、グリピカンが、血管新生阻害剤として作用する可能性があるエンドスタチンの受容体として機能している可能性も示唆されているが（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｅｌｌ（
２００１），７，８１１−８２２）、この機能と細胞増殖との関係も明らかにはなっていない。

以上のように、グリピカン３が細胞増殖に関与する示唆はあったものの、その細胞増殖の機構等については不明であり、グリピカン３を細胞増殖の調節に利用する試みも皆無であった。

本発明に関連する先行技術文献情報としては以下のものがある。
Nat Genet, 1996, 12(3), p.241-7 J Cell Biol, 1998, 141(6), p.1407-14 Cancer Res, 1997, 57(22), p. 5179-84 Gene, 1997, 188(2), p.151-6

本発明は、抗グリピカン３抗体を有効成分として含有する細胞増殖抑制剤を提供することを目的とする。

本発明者らは、鋭意研究を重ねた結果、抗グリピカン３抗体がＡＤＣＣ（抗体依存性細胞傷害、ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）活性、ＣＤＣ（補体依存性細胞傷害、ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）活性により細胞増殖抑制活性を発揮すること
を見出し、本発明を完成させるに至った。また、抗グリピカン３抗体が増殖因子の作用を阻害することによっても、細胞増殖抑制活性を発揮することも予測される。さらに、抗グリピカン３抗体に放射性同位元素、化学療法剤、細菌由来トキシン等の細胞傷害性物質を結合することによっても、細胞増殖抑制活性を発揮し得る。

本発明は、抗グリピカン３抗体を有効成分として含有する治療剤、ならびに抗グリピカン３抗体及び、医薬的に許容される担体又は添加物を含む治療用製剤を提供する。好ましくは本発明の治療用製剤は細胞増殖抑制剤である。また好ましくは、抗グリピカン３抗体はモノクローナル抗体である。また好ましくは、抗グリピカン３抗体は細胞障害活性を有する。

別の態様においては、本発明は、
（１） 抗グリピカン３抗体を有効成分として含む細胞増殖抑制剤、
（２） 抗グリピカン３抗体が細胞傷害活性を有する（１）の細胞増殖抑制剤、
（３） 細胞傷害活性が抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）活性または補体依存性細胞傷害
（ＣＤＣ）活性である（２）の細胞増殖抑制剤、
（４） 細胞が癌細胞である（１）〜（３）のいずれかの細胞増殖抑制剤、
（５） 細胞が肝癌細胞、肺癌細胞、大腸癌細胞、乳癌細胞、前立腺癌細胞、白血病細胞
、リンパ腫細胞および膵臓癌細胞からなる群から選択される（４）の細胞増殖抑制剤、
（６） 細胞が肝癌細胞である（５）の細胞増殖抑制剤、
（７） 抗体がモノクローナル抗体である（１）〜（６）の細胞増殖抑制剤、
（８） 抗体がヒト型またはキメラ化されたものである（１）〜（６）のいずれかの細胞
増殖抑制剤、
（９） グリピカン３に結合する抗体、
（１０） 細胞傷害活性を有する（９）の抗体、
（１１） 肝癌細胞に対して細胞傷害活性を有する（１０）の抗体、および
（１２） 肝癌細胞株ＨｕＨ−７に対して細胞傷害活性を有する（１１）の抗体、
である。

以下、本発明を詳細に説明する。

本発明は、抗グリピカン抗体を有効成分として含む細胞増殖抑制剤である。また、本発明は、抗グリピカン抗体を有効成分として含む細胞の異常増殖に基づく疾患、特に癌に対する治療に用い得る細胞増殖抑制剤である。

本発明の抗グリピカン３抗体としては、例えばヒト型化抗体、ヒト抗体（ＷＯ９６／３３７３５号公報）又はキメラ抗体（特開平４−２２８０８９号公報）、マウス抗体などの公知の抗体のほか、本発明における抗体などが挙げられる。なお、抗体はポリクローナル抗体でもよいがモノクローナル抗体であることが好ましい。

本発明で使用される抗グリピカン３抗体は、細胞増殖抑制能を有するものであれば、その由来、種類（モノクローナル、ポリクローナル）および形状を問わない。

１．抗グリピカン３抗体
本発明で使用される抗グリピカン３抗体は、公知の手段を用いてポリクローナルまたはモノクローナル抗体として得ることができる。本発明で使用される抗グリピカン３抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体は、ハイブリドーマに産生されるもの、および遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものを含む。この抗体はグリピカン３と結合して、細胞増殖を抑制する抗体である。

このような抗体としては、本発明のハイブリドーマクローンにより産生されるモノクローナル抗体が挙げられる。

２．抗体産生ハイブリドーマ
モノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、グリピカン３を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。

具体的には、モノクローナル抗体を作製するには次のようにすればよい。
まず、抗体取得の感作抗原として使用されるヒトグリピカン３を、Ｌａｇｅ，Ｈ．ｅｔ
ａｌ．，Ｇｅｎｅ １８８（１９９７），１５１−１５６に開示されたグリピカン３（ＭＸＲ７）遺伝子／アミノ酸配列を発現することによって得る。すなわち、グリピカン３をコードする遺伝子配列を公知の発現ベクター系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中または培養上清中から目的のヒトグリピカン３タンパク質を公知の方法で精製する。

次に、この精製グリピカン３タンパク質を感作抗原として用いる。あるいは、グリピカン３の部分ペプチドを感作抗原として使用することもできる。この際、部分ペプチドはヒトグリピカン３のアミノ酸配列より化学合成により得ることができる。

抗グリピカン３抗体がＡＤＣＣの作用、ＣＤＣによる作用、増殖因子活性の阻害により細胞増殖抑制活性を阻害することから、また抗グリピカン３抗体に放射性同位元素、化学療法剤、細菌由来トキシン等の細胞傷害性物質を結合させることにより、細胞増殖を抑制し得ることから、本発明の抗グリピカン３抗体の認識するグリピカン３分子上のエピトープは特定のものに限定されず、グリピカン３分子上に存在するエピトープならばどのエピ
トープを認識してもよい。従って、本発明の抗グリピカン３抗体を作製するための抗原は、グリピカン３分子上に存在するエピトープを含む断片ならば、如何なる断片も用いることが可能である。

感作抗原で免疫される哺乳動物としては、特に限定されるものではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するのが好ましく、一般的にはげっ歯類の動物、例えば、マウス、ラット、ハムスター、あるいはウサギ、サル等が使用される。

感作抗原を動物に免疫するには、公知の方法にしたがって行われる。例えば、一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内または皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原をＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅ）や
生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものに所望により通常のアジュバント、例えばフロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に４−２１日毎に数回投与する。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することもできる。

このように哺乳動物を免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を採取し、細胞融合に付されるが、好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。

前記免疫細胞と融合される他方の親細胞として、哺乳動物のミエローマ細胞を用いる。このミエローマ細胞は、公知の種々の細胞株、例えば、Ｐ３（Ｐ３ｘ６３Ａｇ８．６５３）（Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．（１９７９）１２３，１５４８−１５５０）、Ｐ３ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｔｏｐｉｃｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍ
ｕｎｏｌｏｇｙ（１９７８）８１，１−７）、ＮＳ−１（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍ
ｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９７６）６，５１１−５１９）、ＭＰＣ−１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．Ｄ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ（１９７６）８
，４０５−４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（
１９７８）２７６，２６９−２７０）、ＦＯ（ｄｅＳｔ．Ｇｒｏｔｈ，Ｓ．Ｆ．ｅｔ ａ
ｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８０）３５，１−２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，Ｉ．Ｓ．Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９７８）１４８，３１３−３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７
，１３１−１３３）等が好適に使用される。

前記免疫細胞とミエローマ細胞との細胞融合は、基本的には公知の方法、たとえば、ケーラーとミルステインらの方法（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．、
Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８１）７３，３−４６）等に準じて行うことが
できる。

より具体的には、前記細胞融合は、例えば細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えばポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウイルス（ＨＶＪ）等が使用され、更に所望により融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。

免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は任意に設定することができる。例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を１−１０倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なＲＰＭＩ１６４０培養液、ＭＥＭ培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、さらに、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。

細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、
予め３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液（例えば平均分子量１０００−６０００程度）を通常３０−６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することによって目的とする融合細胞（ハイブリドーマ）を形成する。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去する。

このようにして得られたハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えばＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリンおよびチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。上記ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間（通常、数日〜数週間）継続する。ついで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングおよび単一クローニングを行う。

また、ヒト以外の動物に抗原を免疫して上記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球をｉｎ ｖｉｔｒｏでグリピカン３に感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久分裂能を有
するミエローマ細胞と融合させ、グリピカン３への結合活性を有する所望のヒト抗体を得ることもできる（特公平１−５９８７８号公報参照）。さらに、ヒト抗体遺伝子の全てのレパートリーを有するトランスジェニック動物に抗原となるグリピカン３を投与して抗グリピカン３抗体産生細胞を取得し、これを不死化させた細胞からグリピカン３に対するヒト抗体を取得してもよい（国際特許出願公開番号ＷＯ ９４／２５５８５号公報、ＷＯ ９３／１２２２７号公報、ＷＯ９２／０３９１８号公報、ＷＯ ９４／０２６０２号公報参
照）。

このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。

当該ハイブリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法にしたがい培養し、その培養上清として得る方法、あるいはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。

３．組換え型抗体
本発明では、モノクローナル抗体として、抗体遺伝子をハイブリドーマからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた組換え型のものを用いることができる（例えば、Ｖａｎｄａｍｍｅ，Ａ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９９０）１９２，７６７−７７５，１９
９０参照）。

具体的には、抗グリピカン３抗体を産生するハイブリドーマから、抗グリピカン３抗体の可変（Ｖ）領域をコードするｍＲＮＡを単離する。ｍＲＮＡの単離は、公知の方法、例えば、グアニジン超遠心法（Ｃｈｉｒｇｗｉｎ，Ｊ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ
ｉｓｔｒｙ（１９７９）１８，５２９４−５２９９）、ＡＧＰＣ法（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ，Ｐ．ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９８７）１６２，１５６−１
５９）等により行って全ＲＮＡを調製し、ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）等を使用して目的のｍＲＮＡを調製する。また、ＱｕｉｃｋＰｒｅｐ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を用いるこ
とによりｍＲＮＡを直接調製することもできる。

得られたｍＲＮＡから逆転写酵素を用いて抗体Ｖ領域のｃＤＮＡを合成する。ｃＤＮＡの合成は、ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ Ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａ
ｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ（生化学工業社製）等を用いて行う。また、
ｃＤＮＡの合成および増幅を行うには、５'−Ａｍｐｌｉ ＦＩＮＤＥＲ ＲＡＣＥ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）およびＰＣＲを用いた５'−ＲＡＣＥ法（Ｆｒｏｈｍａｎ，Ｍ．
Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８８）８５，
８９９８−９００２、Ｂｅｌｙａｖｓｋｙ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９８９）１７，２９１９−２９３２）等を使用することができる。

得られたＰＣＲ産物から目的とするＤＮＡ断片を精製し、ベクターＤＮＡと連結する。さらに、これより組換えベクターを作製し、大腸菌等に導入してコロニーを選択して所望の組換えベクターを調製する。そして、目的とするＤＮＡの塩基配列を公知の方法、例えば、ジデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法等により確認する。

目的とする抗グリピカン３抗体のＶ領域をコードするＤＮＡを得たのち、これを、所望の抗体定常領域（Ｃ領域）をコードするＤＮＡを含有する発現ベクターへ組み込む。

本発明で使用される抗グリピカン３抗体を製造するには、抗体遺伝子を発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクターに組み込む。次に、この発現ベクターにより、宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させる。

抗体遺伝子の発現は、抗体重鎖（Ｈ鎖）または軽鎖（Ｌ鎖）をコードするＤＮＡを別々に発現ベクターに組み込んで宿主細胞を同時形質転換させてもよいし、あるいはＨ鎖およびＬ鎖をコードするＤＮＡを単一の発現ベクターに組み込んで宿主細胞を形質転換させてもよい（ＷＯ ９４／１１５２３号公報参照）。

また、組換え型抗体の産生には上記宿主細胞だけではなく、トランスジェニック動物を使用することができる。例えば、抗体遺伝子を、乳汁中に固有に産生される蛋白質（ヤギβカゼインなど）をコードする遺伝子の途中に挿入して融合遺伝子として調製する。抗体遺伝子が挿入された融合遺伝子を含むＤＮＡ断片をヤギの胚へ注入し、この胚を雌のヤギへ導入する。胚を受容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギまたはその子孫が産生する乳汁から所望の抗体を得る。また、トランスジェニックヤギから産生される所望の抗体を含む乳汁量を増加させるために、適宜ホルモンをトランスジェニックヤギに使用してもよい（Ｅｂｅｒｔ，Ｋ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９
４）１２，６９９−７０２）。

４．改変抗体
本発明では、上記抗体のほかに、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ抗体、ヒト型化（Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ）抗体を使用できる。これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。

キメラ抗体は、前記のようにして得た抗体Ｖ領域をコードするＤＮＡをヒト抗体Ｃ領域をコードするＤＮＡと連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる。この既知の方法を用いて、本発明に有用なキメラ抗体を得ることができる。

ヒト型化抗体は、再構成（ｒｅｓｈａｐｅｄ）ヒト抗体とも称され、これは、ヒト以外の哺乳動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ；ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）をヒト抗体の相補性決定領域へ移植したも
のであり、その一般的な遺伝子組換え手法も知られている（欧州特許出願公開番号ＥＰ
１２５０２３号公報、ＷＯ ９６／０２５７６号公報参照）。

具体的には、マウス抗体のＣＤＲとヒト抗体のフレームワーク領域（ｆｒａｍｅｗｏｒｋ ｒｅｇｉｏｎ；ＦＲ）とを連結するように設計したＤＮＡ配列を、ＣＤＲ及びＦＲ両
方の末端領域にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いてＰＣＲ法により合成する（ＷＯ９８／１３３８８号公報に記載の方法を参照）。

ＣＤＲを介して連結されるヒト抗体のフレームワーク領域は、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように、抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Ｓａｔｏ，Ｋ．ｅｔａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１
９９３）５３，８５１−８５６）。

キメラ抗体及びヒト型化抗体のＣ領域には、ヒト抗体のものが使用され、例えばＨ鎖では、Ｃγ１、Ｃγ２、Ｃγ３、Ｃγ４を、Ｌ鎖ではＣκ、Ｃλを使用することができる。また、抗体またはその産生の安定性を改善するために、ヒト抗体Ｃ領域を修飾してもよい。

キメラ抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の可変領域とヒト抗体由来の定常領域とからなる。一方、ヒト型化抗体は、ヒト以外の哺乳動物由来抗体の相補性決定領域と、ヒト抗体由来のフレームワーク領域およびＣ領域とからなる。ヒト型化抗体はヒト体内における抗原性が低下されているため、本発明の治療剤の有効成分として有用である。

５．抗体修飾物
本発明で使用される抗体は、抗体の全体分子に限られずグリピカン３に結合し、細胞の増殖を抑制する限り、抗体の断片又はその修飾物であってもよく、二価抗体も一価抗体も含まれる。例えば、抗体の断片としては、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ'）２、Ｆｖ、１個のＦａｂ
と完全なＦｃを有するＦａｂ／ｃ、またはＨ鎖若しくはＬ鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させたシングルチェインＦｖ（ｓｃＦｖ）が挙げられる。具体的には、抗体を酵素、例えばパパイン、ペプシンで処理し抗体断片を生成させるか、または、これら抗体断片をコードする遺伝子を構築し、これを発現ベクターに導入した後、適当な宿主細胞で発現させる（例えば、Ｃｏ，Ｍ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９４）１５２，
２９６８−２９７６、Ｂｅｔｔｅｒ，Ｍ．＆Ｈｏｒｗｉｔｚ，Ａ．Ｈ．Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１７８，４７６−４９６，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．、Ｐｌｕｅｃｋｔｈｕｎ，Ａ．＆Ｓｋｅｒｒａ，Ａ．Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１７８，４７６−４９６，Ａｃａｄｅｍｉｃ
Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．、Ｌａｍｏｙｉ，Ｅ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１２１，６５２−６６３、Ｒｏｕｓｓｅａｕｘ，Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｍｅ
ｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１２１，６６３−６６９、Ｂｉｒｄ，Ｒ．Ｅ．ｅｔ ａｌ．，ＴＩＢＴＥＣＨ（１９９１）９，１３２−１３７参照）。

ｓｃＦｖは、抗体のＨ鎖Ｖ領域とＬ鎖Ｖ領域とを連結することにより得られる。このｓｃＦｖにおいて、Ｈ鎖Ｖ領域とＬ鎖Ｖ領域は、リンカー、好ましくはペプチドリンカーを介して連結される（Ｈｕｓｔｏｎ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａ
ｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８８）８５，５８７９−５８８３）。ｓｃＦｖにおけるＨ鎖Ｖ領域およびＬ鎖Ｖ領域は、本明細書に抗体として記載されたもののいずれの由来であってもよい。Ｖ領域を連結するペプチドリンカーとしては、例えばアミノ酸１２−１９残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。

ｓｃＦｖをコードするＤＮＡは、前記抗体のＨ鎖またはＨ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡ、およびＬ鎖またはＬ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡのうち、それらの配列のうちの全部又は所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ部分を鋳型とし、その両端を規定するプライマー対を用いてＰＣＲ法により増幅し、次いで、さらにペプチドリンカー部分をコードするＤＮＡ、およびその両端が各々Ｈ鎖、Ｌ鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合せて増幅することにより得られる。

また、一旦ｓｃＦｖをコードするＤＮＡが作製されると、それらを含有する発現ベクター、および該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いることにより、常法に従ってｓｃＦｖを得ることができる。

これら抗体の断片は、前記と同様にしてその遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体の断片も包含される。

抗体の修飾物として、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）や細胞傷害性物質等の各種分子と結合した抗グリピカン抗体を使用することもできる。本発明における「抗体」にはこれらの抗体修飾物も包含される。このような抗体修飾物は、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。なお、抗体の修飾方法はこの分野においてすでに確立されている。

さらに、本発明で使用される抗体は、二重特異性抗体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔ
ｉｂｏｄｙ）であってもよい。二重特異性抗体はグリピカン３分子上の異なるエピトープを認識する抗原結合部位を有する二重特異性抗体であってもよいし、一方の抗原結合部位がグリピカン３を認識し、他方の抗原結合部位が化学療法剤、細胞由来トキシン、放射性物質等の細胞傷害性物質を認識してもよい。この場合、グリピカン３を発現している細胞に直接細胞傷害性物質を作用させ腫瘍細胞に特異的に傷害を与え、腫瘍細胞の増殖を抑えることが可能である。二重特異性抗体は２種類の抗体のＨＬ対を結合させて作製することもできるし、異なるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを融合させて二重特異性抗体産生融合細胞を作製し、得ることもできる。さらに、遺伝子工学的手法により二重特異性抗体を作製することも可能である。

６．組換え型抗体または改変抗体の発現および産生
前記のように構築した抗体遺伝子は、公知の方法により発現させ、取得することができる。哺乳類細胞の場合、常用される有用なプロモーター、発現させる抗体遺伝子、その３'側下流にポリＡシグナルを機能的に結合させて発現させることができる。例えばプロモ
ーター／エンハンサーとしては、ヒトサイトメガロウィルス前期プロモーター／エンハンサー（ｈｕｍａｎ ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ ｉｍｍｅｄｉａｔｅ ｅａｒｌｙ ｐｒｏｍｏｔｅｒ／ｅｎｈａｎｃｅｒ）を挙げることができる。

また、その他に本発明で使用される抗体発現に使用できるプロモーター／エンハンサーとして、レトロウィルス、ポリオーマウィルス、アデノウィルス、シミアンウィルス４０（ＳＶ４０）等のウィルスプロモーター／エンハンサー、あるいはヒトエロンゲーションファクター１α（ＨＥＦ１α）などの哺乳類細胞由来のプロモーター／エンハンサー等が挙げられる。

ＳＶ４０プロモーター／エンハンサーを使用する場合はＭｕｌｌｉｇａｎらの方法（Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１０８）により、また、ＨＥＦ１αプロモーター／エンハンサーを使用する場合はＭｉｚｕｓｈｉｍａらの方法（Ｎｕｃｌｅｉｃ ＡｃｉｄｓＲ
ｅｓ．（１９９０）１８，５３２２）により、容易に遺伝子発現を行うことができる。

大腸菌の場合、常用される有用なプロモーター、抗体分泌のためのシグナル配列及び発現させる抗体遺伝子を機能的に結合させて当該遺伝子を発現させることができる。プロモーターとしては、例えばｌａｃｚプロモーター、ａｒａＢプロモーターを挙げることができる。ｌａｃｚプロモーターを使用する場合はＷａｒｄらの方法（Ｎａｔｕｒｅ（１０９８）３４１，５４４−５４６；ＦＡＳＥＢ Ｊ．（１９９２）６，２４２２−２４２７）
により、あるいはａｒａＢプロモーターを使用する場合はＢｅｔｔｅｒらの方法（Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２４０，１０４１−１０４３）により発現することができる。

抗体分泌のためのシグナル配列としては、大腸菌のペリプラズムに産生させる場合、ｐｅｌＢシグナル配列（Ｌｅｉ，Ｓ．Ｐ．ｅｔ ａｌ Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．（１９８７）１６９，４３７９）を使用すればよい。そして、ペリプラズムに産生された抗体を分離した後、抗体の構造を適切に組み直して（ｒｅｆｏｌｄ）使用する。

複製起源としては、ＳＶ４０、ポリオーマウィルス、アデノウィルス、ウシパピローマウィルス（ＢＰＶ）等の由来のものを用いることができ、さらに、宿主細胞系で遺伝子コピー数増幅のため、発現ベクターは、選択マーカーとしてアミノグリコシドトランスフェラーゼ（ＡＰＨ）遺伝子、チミジンキナーゼ（ＴＫ）遺伝子、大腸菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｅｃｏｇｐｔ）遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素（ｄｈｆｒ）遺伝子等を含むことができる。

本発明で使用される抗体の製造のために、任意の発現系、例えば真核細胞又は原核細胞系を使用することができる。真核細胞としては、例えば樹立された哺乳類細胞系、昆虫細胞系、真糸状菌細胞および酵母細胞などの動物細胞等が挙げられ、原核細胞としては、例えば大腸菌細胞等の細菌細胞が挙げられる。

好ましくは、本発明で使用される抗体は、哺乳類細胞、例えばＣＨＯ、ＣＯＳ、ミエローマ、ＢＨＫ、Ｖｅｒｏ、ＨｅＬａ細胞中で発現される。

次に、形質転換された宿主細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏまたはｉｎ ｖｉｖｏで培養して目的とする抗体を産生させる。宿主細胞の培養は公知の方法に従い行う。例えば、培養液として、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、ＲＰＭＩ１６４０、ＩＭＤＭを使用することができ、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。

７．抗体の分離、精製
前記のように発現、産生された抗体は、細胞、宿主動物から分離し均一にまで精製することができる。本発明で使用される抗体の分離、精製はアフィニティーカラムを用いて行うことができる。例えば、プロテインＡカラムを用いたカラムとして、Ｈｙｐｅｒ Ｄ、
ＰＯＲＯＳ、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆ．Ｆ．（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）等が挙げられる。
その他、通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよく、何ら限定されるものではない。例えば、上記アフィニティーカラム以外のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析等を適宜選択、組み合わせることにより、抗体を分離、精製することができる（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎ
ｕａｌ．Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ，Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８）。

８．抗体の活性の確認
本発明で使用される抗体の抗原結合活性（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ，Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ
Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８）、リガンドレセプター結合阻害活性（
Ｈａｒａｄａ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９９３）５，６８１−６９０）の測定には公知の手段を使用することができる。

本発明で使用される抗グリピカン３抗体の抗原結合活性を測定する方法として、ＥＬＩＳＡ（酵素結合免疫吸着検定法）、ＥＩＡ（酵素免疫測定法）、ＲＩＡ（放射免疫測定法）あるいは蛍光抗体法を用いることができる。例えば、酵素免疫測定法を用いる場合、グリピカン３をコーティングしたプレートに、抗グリピカン３抗体を含む試料、例えば、抗グリピカン３抗体産生細胞の培養上清や精製抗体を加える。アルカリフォスファターゼ等の酵素で標識した二次抗体を添加し、プレートをインキュベートし、洗浄した後、ｐ−ニトロフェニル燐酸などの酵素基質を加えて吸光度を測定することで抗原結合活性を評価することができる。

本発明で使用される抗体の活性を確認するには、抗グリピカン３抗体の中和活性を測定する。

９．細胞傷害活性
本発明に使用する抗体は、細胞傷害活性として、ＡＤＣＣ活性またはＣＤＣ活性を有する。
ＡＤＣＣ活性は、エフェクター細胞と標的細胞と抗グリピカン３抗体を混合し、ＡＤＣＣの程度を調べることにより測定することができる。エフェクター細胞として例えば、マウス脾細胞やヒト末梢血や骨髄から分離した単核球等を利用することができ、標的細胞としてはヒト肝癌細胞株ＨｕＨ−７等のヒト株化細胞を用いることができる。標的細胞をあらかじめ⁵¹Ｃｒにより標識し、これに抗グリピカン３抗体を加えインキュベーションを行い、その後、標的細胞に対し適切な比のエフェクター細胞を加えインキュベーションを行う。インキュベーション後上清を採取し、上清中の放射活性をカウントすることによりＡＤＣＣ活性を測定することができる。

また、ＣＤＣ活性は、上述の標識標的細胞と抗グリピカン３抗体を混合し、その後補体を添加してインキュベーションを行い、培養後に上清中の放射活性をカウントすることにより測定することができる。

抗体が細胞傷害活性を発揮するには、Ｆｃ部分が必要であるので、本発明の細胞増殖阻害剤が、抗体の細胞傷害活性を利用したものである場合には、本発明に使用する抗グリピカン３抗体はＦｃ部分を含んでいることが必要である。

１０．血管新生抑制
本発明の抗グリピカン３抗体を血管新生抑制に用いることもできる。

１１．投与方法および製剤
本発明の細胞増殖抑制剤は、細胞の異常増殖に基づく疾患、特に癌に対する治療又は改善を目的として使用される。

本発明の細胞増殖抑制剤の対象となる癌細胞は、特に制限されないが、肝癌、肺癌、大腸癌、乳癌、前立腺癌、白血病、リンパ腫、膵臓癌が好ましく、肝癌が特に好ましい。

有効投与量は、一回につき体重１ｋｇあたり０．００１ｍｇから１０００ｍｇの範囲で選ばれる。あるいは、患者あたり０．０１〜１０００００ｍｇ／ｂｏｄｙの投与量を選ぶことができる。しかしながら、本発明の抗グリピカン３抗体を含有する治療剤はこれらの投与量に制限されるものではない。

また、本発明の治療剤の投与時期としては、疾患の臨床症状が生ずる前後を問わず投与することができる。

本発明の抗グリピカン３抗体を有効成分として含有する治療剤は、常法にしたがって製剤化することができ（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅ
ｎｃｅ，ｌａｔｅｓｔ ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｍａｒｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎ
ｙ，Ｅａｓｔｏｎ，米国）、医薬的に許容される担体や添加物を共に含むものであってもよい。

このような担体および医薬添加物の例として、水、医薬的に許容される有機溶剤、コラーゲン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシビニルポリマー、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリアクリル酸ナトリウム、アルギン酸ナトリウム、水溶性デキストラン、カルボキシメチルスターチナトリウム、ペクチン、メチルセルロース、エチルセルロース、キサンタンガム、アラビアゴム、カゼイン、寒天、ポリエチレングリコール、ジグリセリン、グリセリン、プロピレングリコール、ワセリン、パラフィン、ステアリルアルコール、ステアリン酸、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）、マンニトール、ソルビトール、ラクトース、医薬添加物として許容される界面活性剤等が挙げられる。

実際の添加物は、本発明治療剤の剤型に応じて上記の中から単独で又は適宜組み合わせて選ばれるが、もちろんこれらに限定するものではない。例えば、注射用製剤として使用する場合、精製された抗グリピカン３抗体を溶剤、例えば生理食塩水、緩衝液、ブドウ糖溶液等に溶解し、これに吸着防止剤、例えばＴｗｅｅｎ８０、Ｔｗｅｅｎ２０、ゼラチン、ヒト血清アルブミン等を加えたものを使用することができる。あるいは、使用前に溶解再構成する剤形とするために凍結乾燥したものであってもよく、凍結乾燥のための賦形剤としては、例えば、マンニトール、ブドウ糖等の糖アルコールや糖類を使用することができる。

以下、実施例により本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明はこれら実施例等にその技術的範囲が限定されるものではない。

実施例１ グリピカン−３合成ペプチドに対するモノクローナル抗体作製
ヒトグリピカン−３蛋白のアミノ酸配列３５５番目から３７１番目のペプチド（ＲＱＹＲＳＡＹＹＰＥＤＬＦＩＤＫＫ）を合成し、キーホール・リンペット・ヘモシアニン（ＫＬＨ）に合成ペプチドをマレインイミドベンゾイルオキシサクシンイミド（ＭＢＳ）型架橋剤により結合し、免疫原とした。マウス（ＢＡＬＢ／ｃ、雌６週齢）に１００μｇ／匹で３回免疫し、血清中の抗体価を検定した。抗体価検定法として、ペプチド（０．５μｇ）を固相化したプレートに希釈血清を反応させ、ＨＲＰ標識抗マウス抗体の反応を経て、基質を添加後に得られた発色を４５０ｎｍの吸光度を測定する方法（ペプチド固相ＥＬＩＳＡ法）を使用した。抗体価を確認した後に、脾臓細胞を採取し、骨髄腫細胞（Ｐ３／Ｘ６３−Ａｇ８）との細胞融合（コーラー，Ｇ、ミルステイン，Ｃ：Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５（１９７５））によりハイブリドーマを作製した。５種類のハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体を精製した後、ペプチド固相ＥＬＩＳＡ法を用いてペプチドへの結合活性を測定し、結合活性の高いＩｇＧ１抗体（以下、Ｋ６５３４）及びＩｇＧ３抗体（以下、Ｋ６５１１）を選択した。

実施例２ 抗グリピカン３抗体を用いた細胞増殖の抑制
ＡＤＣＣ（ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）活性、ＣＤＣ（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｃ
ｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）活性の測定はＣｕｒｒｅｎｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｉｍ
ｍｕｎｏｄｏｇｙ，Ｃｈａｐｔｅｒ ７．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ ｓｔｕｄｉｅｓ ｉｎ ｈｕｍａｎｓ，Ｅｄｉｔｏｒ，Ｊｏｈｎ Ｅ，Ｃｏｌｏｇａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，１９９３の方法に従った。

１．エフェクター細胞の調製
ＣＢＡ／Ｎマウス（８週令、オス）から脾臓を摘出し、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＧＩＢＣＯ社製）中で脾細胞を分離した。１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ、ＨｙＣｌｏｎｅ社製）を含む同培地で洗浄後、細胞濃度を５×１０⁶／ｍＬに調製し、エフェクター細胞とした
。

２．補体溶液の調製
Ｂａｂｙ Ｒａｂｂｉｔ Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ（ＣＥＤＡＲＬＡＮＥ社製）を１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地（ＧＩＢＣＯ社製）にて１０倍希釈し、補体溶液とした。

３．標的細胞の調製
ヒト肝癌細胞株ＨｕＨ−７（ＪＣＲＢ Ｎｏ．ＪＣＲＢ０４０３、ヒューマンサイエン
ス研究支援バンク）を、０．２ｍＣｉの⁵¹Ｃｒ−ｓｏｄｉｕｍ ｃｈｒｏｍａｔｅ（Ａｍ
ｅｒｓｈａｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃｈ社製）とともに、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃にて１時間培養することにより放射性標識した。放射性標識の後、細胞を１０％ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ１６４０培地にて３回洗浄し、細胞濃度を２×１０⁵／
ｍＬに調製し、標的細胞とした。

４．ＡＤＣＣ活性の測定
９６ウェルＵ底プレート（Ｂｅｃｋｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社製）に、標的細胞と
、抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）を５０μＬずつ加え、氷上にて１５分間反応させた。その後、エフェクター細胞１００μＬを加え、炭酸ガスインキュベーター内で４時間培養した。抗体の終濃度は０または１０μｇ／ｍＬとした。培養後、１００μＬの上清を回収し、ガンマカウンター（ＣＯＢＲＡ ＩＩ ＡＵＴＯ−ＧＡＭＭＡ、ＭＯＤＥＬ Ｄ５０
０５、Ｐａｃｋａｒｄ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ Ｃｏｍｐａｎｙ社製）で放射活性を測定した。細胞傷害活性（％）は（Ａ−Ｃ）／（Ｂ−Ｃ）×１００により求めた。Ａは各試料における放射活性（ｃｐｍ）、Ｂは１％ＮＰ−４０（半井社製）を加えた試料における放射活性（ｃｐｍ）、Ｃは標的細胞のみを含む試料の放射活性（ｃｐｍ）を示す。実験はｄｕｐｌｉｃａｔｅにて行い、平均値を算出した。

５．ＣＤＣ活性の測定
９６ウェル平底プレート（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社製）に、標的細胞と、
抗グリピカン３抗体（Ｋ６５１１）を５０μＬずつ加え、氷上にて１５分間反応させた。その後、補体溶液１００μＬを加え、炭酸ガスインキュベーター内で４時間培養した。抗体の終濃度は０または３μｇ／ｍＬとした。培養後、１００μＬの上清を回収し、ガンマカウンターで放射活性を測定した。細胞傷害活性（％）は、「４．ＡＤＣＣ活性の測定」と同様にして求めた。実験はｄｕｐｌｉｃａｔｅにて行い、平均値を算出した。

図１にＡＤＣＣ活性を、図２にＣＤＣ活性を示すが、この結果より抗グリピカン３抗体はヒト肝癌細胞株ＨｕＨ−７に対して、ＡＤＣＣ活性、ＣＤＣ活性を示し細胞増殖を抑制することが明らかになった。

実施例３ ＨｕＨ−７細胞上のグリピカン発現量の測定
約５×１０⁵個のＨｕＨ−７細胞を、１００μＬのＦＡＣＳ／ＰＢＳ（１ｇのウシ血清
アルブミン（ＳＩＧＭＡ社製を１ＬのＣｅｌｌＷＡＳＨ（Ｂｅｃｋｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎ
ｓｏｎ社製）に溶解して調製）に懸濁後、抗グリビカン３抗体（Ｋ６５１１）またはコントロール抗体としてマウスＩｇＧ２ａ（Ｂｉｏｇｅｎｅｓｉｓ社製）を２５μｇ／ｍＬとなるように加え、氷上にて３０分間静置した。ＦＡＣＳ／ＰＢＳにて洗浄後、１００μＬのＦＡＣＳ／ＰＢＳに懸濁し、４μＬのＧｏａｔ Ａｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ Ｉｇ ＦＩＴＣ
（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社製）を加え、氷上にて３０分間静置した。

ＦＡＣＳ／ＰＢＳにて２回洗浄後、１ｍＬのＦＡＣＳ／ＰＢＳに懸濁し、フローサイトメーター（ＥＰＩＣＳ ＸＬ、ＢＥＣＫＭＡＮ ＣＯＵＬＴＥＲ）にて細胞の蛍光強度を測定した。

図３にフローサイトメトリーの結果を示す。ＨｕＨ−７細胞上でグリピカン３が発現しており、このことは抗グリピカン３抗体が細胞上に発現したグリピカン３と結合して細胞増殖を抑制することを示している（図３）。

実施例４ ＦＣＭを用いた癌細胞パネルにおけるＧＰＣ３発現解析
ヒト癌細胞株（Ｌｕｎｇ，Ｃｏｌｏｎ，Ｒｅｃｔｕｍ，Ｂｒｅａｓｔ，Ｐｒｏｓｔａｔｅ，Ｌｅｕｋｅｍｉａ，Ｌｙｍｐｈｏｍａ，Ｍｙｅｌｏｍａ，Ｐａｎｃｒｅａｓ，Ｌｉｖｅｒ）におけるグリピカン３（ＧＰＣ３）の発現をＦＣＭを用いて解析した。

細胞は２日間培養後アッセイを行った。付着細胞は、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ（Ｃａｔ．Ｎｏ．２５３００−０５４，Ｌｏｔ １４２１０，ＧＩＢＣＯ）をＣｅｌｌ ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｂｕｆｆｅｒ（Ｃａｔ．Ｎｏ．１３１５０−０１６，Ｌｏｔ １０９８５５４，ＧＩＢＣＯ）で１０倍に希釈した溶液を用いて回収した。回収した細胞を抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４，６００μｇ／ｍｌ）または陰性対照ｍＩｇＧ２ａ抗体（Ｂｉｏｇｅｎｅｓｉｓ，Ｍ−ＩｇＧ２ａ−ｉ，Ｌｏｔ ＥＡ９９０７１９Ａ，１ｍｇ／ｍｌ）
と氷上で反応させた（最終抗体濃度１０ｕｇ／ｍｌ）。細胞を洗浄後、ＦＩＴＣ標識抗マウスＩｇ抗体（Ｃａｔ．Ｎｏ．３４９０３１、ＢＤ ＰｈａｒＭｉｎｇｅｎ）と氷上で反
応させた（２μｌ／ｔｅｓｔ）。細胞を洗浄後、その蛍光強度をフローサイトメーター（ＥＰＩＣＳ ＸＬ、ＢＥＣＫＭＡＮ ＣＯＵＬＴＥＲ）にて測定した。その結果、Ａ５４９、ＮＣＩ−Ｈ４６０、ＮＣＩ−Ｈ２３、ＮＣＩ−Ｈ２２６、ＤＭＳ１１４、ＥＫＶＸ、ＨＯＰ−６２、ＮＣＩ−Ｈ３２２Ｍ（以上、Ｌｕｎｇ）、Ｐ３０／ＯＨＫ、ＢＡＬＬ−１、ＴＨＰ−１、Ｐ３９／ＴＳＵ（以上、Ｌｅｕｋｅｍｉａ）、ＭＬＭＡ、Ｒａｍｏｓ、Ｕ−９３７（以上、Ｌｙｍｐｈｏｍａ）、ＳＷ４８０、ＣＯＬＯ２０５、ＬｏＶｏ、ＳＷ８３７（以上、Ｃｏｌｏｎ）、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１、ＳＫ−ＢＲ−３、ＭＤＡ−ＭＢ−４６８（以上、Ｂｒｅａｓｔ）、ＬＮＣａＰ、２２Ｒｖ１（以上、Ｐｒｏｓｔａｔｅ）、ＭＩＡＰａＣａ−２（Ｐａｎｃｒｅａｓ）、ＨｅｐＧ２（Ｌｉｖｅｒ）において、ＧＰＣ３の発現が確認された。以上の結果から、本発明の細胞増殖抑制剤は、肺癌、大腸癌、乳癌、前立腺癌、白血病、リンパ腫、膵臓癌などの治療に有効であると考えられる。

本発明により、抗グリピカン３抗体を有効成分とする細胞増殖抑制剤が提供される。また、本発明により抗グリピカン３抗体を有効成分とする癌細胞増殖抑制剤が提供される。抗グリピカン３抗体はヒト肝癌細胞株ＨｕＨ−７細胞上に発現したグリピカン３と結合して細胞増殖を抑制することから、細胞増殖抑制剤、特に癌細胞抑制剤として有効である。

本明細書に引用されたすべての刊行物は、その内容の全体を本明細書に取り込むものとする。また、添付の請求の範囲に記載される技術思想および発明の範囲を逸脱しない範囲内で本発明の種々の変形および変更が可能であることは当業者には容易に理解されるであろう。本発明はこのような変形および変更をも包含することを意図している。

図１は、抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）のＨｕＨ−７細胞に対するＡＤＣＣ活性を示す図である。 図２は、抗グリピカン３抗体（Ｋ６５１１）のＨｕＨ−７細胞に対するＣＤＣ活性を示す図である。 図３は、ＨｕＨ−７細胞上にグリピカンが発現していることを示す図である。 図４Ａは、ヒト肺癌細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。 図４Ｂは、ヒト白血病細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。 図４Ｃは、ヒトリンパ腫細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。 図４Ｄは、ヒト大腸癌細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。 図４Ｅは、ヒト乳癌細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。 図４Ｆは、ヒト前立腺癌細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。 図４Ｇは、ヒト膵臓癌細胞株およびヒト肝癌細胞株についてのＧＰＣ３発現のＦＡＣＳ解析の結果を示す図である。抗グリピカン３抗体（Ｋ６５３４）で解析した結果である。

Claims (7)

1. 抗グリピカン３抗体を有効成分として含む細胞増殖抑制剤。
2. 抗グリピカン３抗体が細胞傷害活性を有する請求項１に記載の細胞増殖抑制剤。
3. 細胞傷害活性が抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）活性または補体依存性細胞傷害（ＣＤＣ）活性である請求項２に記載の細胞増殖抑制剤。
4. 細胞が癌細胞である請求項１〜３のいずれか１項に記載の細胞増殖抑制剤。
5. 細胞が肝癌細胞である請求項１〜３のいずれか１項に記載の細胞増殖抑制剤。
6. 抗体がモノクローナル抗体である請求項１〜５のいずれか１項に記載の細胞増殖抑制剤。
7. 抗体がヒト型またはキメラ化されたものである請求項１〜５のいずれか１項に記載の細胞増殖抑制剤。
   

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