KR100508289B1

KR100508289B1 - Ｃｄ１９×ｃｄ３ 특이 폴리펩티드 및 그의 용도

Info

Publication number: KR100508289B1
Application number: KR10-2000-7011396A
Authority: KR
Inventors: 되르켄베른트; 리이트뮐러게르트; 쿠퍼페터; 룻터뷔세랄프; 바르고우랄프; 뢰프플러안야
Original assignee: 마이크로메트 에이지
Priority date: 1998-04-21
Filing date: 1999-04-21
Publication date: 2005-08-17
Also published as: EP1071752A1; HRP20000714A2; ATE244758T1; US20060193852A1; US7112324B1; CZ302070B6; DE69909459D1; DE69909459T2; HUP0102535A2; IL138857A0; CN1299410A; EP1348715A2; ES2203141T3; SK286683B6; AU4135299A; EP1348715A3; HK1037674A1; PT1071752E; CN1302103C; CA2326389A1

Abstract

본 발명은 CD19 및 CD3 항원 각각에 대해 특이적인 적어도 2개의 결합 부위를 포함하는 단쇄 다기능 폴리펩티드에 관한 것으로서,

상기 폴리펩티드는 예정된 기능을 가진 적어도 1개의 추가 도메인을 포함하며, 상기 폴리펩티드를 포함하는 벡터 뿐만 아니라 상기 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 상기 폴리뉴클레오티드 또는 벡터에 의해 형질전환된 숙주세포 및 상기 폴리펩티드의 제조에 사용되는 이들의 용도가 기술되어 있으며,

조성물, 바람직하게는 약학 조성물 및 진단용 조성물은 상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 또는 벡터 중 어느 하나를 포함하며,

상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 및 벡터는 비-호지킨 림프종과 같은 B-세포 악성 종양에 대한 면역요법을 위한 약학 조성물을 제조하기 위한 용도를 가지는 것을 특징으로 한다.

Description

ＣＤ１９×ＣＤ３ 특이 폴리펩티드 및 그의 용도{ＣＤ１９×ＣＤ３ SPECIFIC POLYPEPTIDES AND USES THEREOF}

도 1:

SDS-Page; 다른 양의 단백질에 의한, 정제된 bscCD19×CD3 단편의 코마시 염색. 마커의 분자량(kDa)은 좌측에 표시되어 있다.

도 2:

다른 CD19-양성 B세포계(BJAB, SKW6.4, Blin-1, Daudi, Raji), CD19-음성 B세포계 BL60 및 CD3-양성 주르캇(Jurkat) 세포 및 제1 사람 PBMC상에서 bscCD19×CD3(200㎍/㎖)에 의한 FACS-분석.

도 3:

자극받지 않은 사람 PBMC 및 다른 B세포계에 의한 ⁵¹Cr 방출 분석에 있어서 bscCD19×CD3의 세포독성. 효과 인자: 표적 세포 비율 10:1; 배양시간 4시간. 모든 삼복제물에서 표준편차는 7% 이하이었다.

도 4:

형질세포종 세포계 L363 및 NCI 및 림프종 세포계 Daudi에 대한 자극받지 않은 사람 PBL에 의한 크롬 방출 세포독성 분석. E:T 비율은 20:1, 배양시간은 8시간.

도 5:

크롬 방출분석에서 친 항-CD19 항체 HD37에 의한 bscCD19×CD3의 세포독성 억제; 배양시간 8시간; E:T 비율 20:1; bscCD19×CD3의 농도 1ng/㎖.

도 6:

증가량의 EGTA를 첨가한후 Daudi 세포에 대한 자극받지 않은 PBMC에 의한 세포독성 분석, E:T 비율 10:1, 배양시간 4시간.

도 7:

다른 E:T 비율에서 타겟 세포로서 자극받지 않은 사람 PBMC 및 Blin-1에 의한 ⁵¹Cr 방출 분석에 있어서 bscCD19×CD3의 세포독성; 배양시간 4시간; 종래 이특이적 항체의 농도 3㎍/㎖; bsc 17-1A×CD3의 농도 100ng/㎖; E:T 비율은 상기와 같음.

도 8:

bscCD19×CD3 항체의 DNA-서열 및 단백질-서열(FLAG-꼬리 함유 변형체). 숫자는 뉴클레오티드(nt) 위치를 가리키며, 대응하는 아미노산 서열은 뉴클레오티드 서열아래에 서술되어 있다. 이특이적 항체를 위한 DNA 서열의 코드화는 위치 1에서 시작하며, 위치 1593에서 끝난다. 첫 번째 6개의 nt(위치 -10 내지 -5) 및 마지막 6개의 nt(위치 1596 내지 1601)는 EcoRI 및 SalI 각각을 위한 제한효소 절단위치를 포함한다. 뉴클레오티드 1 내지 57은 선도서열을 특이화하며; 뉴클레오티드 82 내지 414 및 460 내지 831은 V_LCD19 및 V_HCD19 각각을 코드화하며; 뉴클레오티드 847 내지 1203 및 1258 내지 1575는 V_HCD3 및 V_LCD3 각각을 코드화하고; 및 뉴클레오티드 1576 내지 1593은 His-꼬리를 코드화한다.

도 9:

bscCD19×CD3을 통한 자가이식성 일차 T-림프백혈구의 재생에 의한 일차 (악성) CD19⁺ B-세포의 소모.

A)출발지점(t=0): 10% FCS가 각각 보충된 1㎖ RPMI 1640 배지의 부피에서 24-웰 조직배양물 플레이트에 n=3×10⁶ PBL/웰을 심었다. CD4⁺-세포 및 CD8⁺ T-세포의 초기 퍼센테이지 뿐만 아니라 CD19⁺ B-세포의 초기 백분율이 표시되어 있다.

B-G)60U/㎖ IL-2와 함께 또는 없이 bscCD19×CD3(표시되어 있는 농도)의 부재(B-C) 또는 존재(D-G)하에서 37℃/5% CO₂에서 배양 t=5일후 상대적 B- 및 CD4⁺- 및 CD8⁺ T-세포 계수. 음성 조절은 표적 세포 특이성과 무관한 이특이적 단쇄 항체를 포함하거나 또는 전체 (c)에서 이특이적 항체가 없다.

도 10:

bscCD19×CD3을 위한 정제단계

도 11:

bscCD19×CD3의 순도에 대한 SDS-PAGE 분석. 콜로이드 코마시-블루 염색된 SDS 4-12% 구배 폴리아크릴아미드 겔이 나타나 있다. 레인 1 및 6(분자크기 마커); 레인 2(세포배양물 상층액); 레인 3(양이온교환 크로마토그래피); 레인 4(코발트 킬레이트 친화성 크로마토그래피로부터의 활성 프랙션); 레인 5(겔 여과로부터의 활성 프랙션). 세포배양물 상층액 및 여러 컬럼 프랙션으로부터의 동등량의 단백질(2㎍)을 분석하였다. 분자량 표준의 크기(kDa)는 우측에 표시되어 있다. 화살표는 bscCD19×CD3의 위치를 나타낸다.

도 12:

bscCD19×CD3의 양이온교환 크로마토그래피. 단백질 농도는 280㎚에서의 흡광도에 의해 측정되었다(mAu, 좌측). 단백질의 용출 프로필은 실선으로 나타나 있다. NaCl 단계 구배의 프로필은 직선의 실선으로 나타나 있으며(%B, 우측), 수집된 프랙션은 점선으로 표시되어 있다. BscCD19×CD3은 프랙션 F6에서 관찰되었다.

도 13:

bscCD19×CD3의 코발트 킬레이트 친화성 크로마토그래피. 단백질 농도는 280㎚에서의 흡광도에 의해 측정되었다(mAu, 좌측). 단백질의 용출 프로필은 실선으로 나타나 있다. 이미다졸 구배는 직선의 실선으로 나타나 있으며(%B, 우측), 수집된 프랙션은 점선으로 표시되어 있다. BscCD19×CD3은 프랙션 F7에서 관찰되었다.

도 14:

항-CD19×항-CD3의 겔 여과. 단백질 농도는 280㎚에서의 흡광도에 의해 측정되었다(mAu, 좌측). 단백질의 용출 프로필은 실선으로 나타나 있다. 점선은 수집된 프랙션을 표시한다. BscCD19×CD3은 약 60kDa의 분자크기에 대응하는 프랙션 F7에서 관찰되었다.

도 15:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 γ-글루타밀 트랜스페라아제(GGT)의 혈액 레벨. GGT 수준은 표준 임상 생화학 방법에 의해 측정되었으며, 유닛/ℓ로 표시한다. 시간 축은 개별적으로 약물첨가후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물투여의 시간지점을 표시한다.

도 16:

환자 A-B의 비장의 초음파 측정.

A: bscCD19×CD3 요법전에 1999년 4월 12일 비장크기 측정. 본 도면은 악성 B세포의 침입으로 인해 확대된 비장(크기 146㎜×69.2㎜)을 나타낸다.

B: 4월 14일에 3㎍으로 치료하고, 4월 15일에 10㎍으로 치료한후 1999년 4월 16일에 비장크기를 측정함. 본 도면은 bscCD19×CD3에 의한 조직적인 치료에 의해 비장의 크기가 132㎜×58.9㎜으로 축소됨을 증명한다. 표 1에 개시된 크기값에 대한 단일 측정의 불일치는 다른 공간적으로 초음파-계 기관 크기 측정에 의해 설명된다. 두 치수는 (+) 및 (×)으로 표시된다.

도 17:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 혈액 백혈구계수. 백혈구의 수는 기가 부/ℓ로 표시된다. 시간 축은 개별적으로 약물 첨가 후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물 투여의 시간 지점을 표시한다.

도 18:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 C-반응성 단백질(CRP)의 혈액 레벨. CRP 수준은 표준 임상 생화학 방법에 의해 측정되었으며, ㎎/㎗로 표시한다. 시간 축은 개별적으로 약물 첨가 후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물 투여의 시간 지점을 표시한다.

도 19:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 종양 괴사 인자-α(TNF)의 혈액 레벨. TNF 수준은 ELISA에 의해 측정되었으며, ng/㎖로 표시한다. 시간 축은 개별적으로 약물 첨가 후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물 투여의 시간 지점을 표시한다.

도 20:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 인터류킨-6(IL-6)의 혈액 레벨. IL-6 수준은 ELISA에 의해 측정되었으며, pg/㎖로 표시한다. 시간 축은 개별적으로 약물 첨가 후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물투여의 시간지점을 표시한다.

도 21:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 인터류킨-8(IL-8)의 혈액 레벨. IL-8 수준은 ELISA에 의해 측정되었으며, pg/㎖로 표시한다. 시간 축은 개별적으로 약물첨가 후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물 투여의 시간 지점을 표시한다.

도 22:

bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 가용성 인터류킨-2 수용체 α-사슬(IL-2R)의 혈액 레벨. IL-2R 수준은 ELISA에 의해 측정되었으며, 단위/㎖로 표시한다. 시간 축은 개별적으로 약물 첨가 후 첫번째 약물 치료 개시 후 날(d) 및 0에서 출발한 시간(h)을 나타낸다. 화살표는 약물 투여의 시간 지점을 표시한다.

본 발명은 하기 생물학적 실시예를 참고로 하여 기술될 것이며, 이는 주로 상술적이며, 본 발명의 범주를 제한하는 것으로 간주되지 않는다.

실시예 1: 다양한(V) 면역글로불린 도메인의 클로닝

HD37 림프잡종 세포종(22)으로부터의 V 경쇄(VL) 및 V 중쇄(VH)은 표준 PCR 방법(23)에 따라 클론되었다. cDNA 합성은 올리고 dT 프라이머 및 Taq 폴리머라아제에 의해 실시되었다.

프라이머 목록

5'L1:

GAAGCACGCGTAGATATCKTGMTSACCCAAWCTCCA[서열번호: 1]

3'K:

GAAGATGGATCCAGCGGCCGCAGCATCAGC[서열번호: 2]

5'H1:

CAGCCGGCCATGGCGCAGGTSCAGCTGCAGSAG[서열번호: 3]

3'G:

ACCAGGGGCCAGTGGATAGACAAGCTTGGGTGTCGTTTT[서열번호: 4]

5'VLB5RRV:

AGGTGTACACTCCATATCCAGCTGACCCAGTCTCCA[서열번호: 5]

3'VLGS15:

GGAGCCGCCGCCGCCAGAACCACCACCTTTGATCTCGAGCTTGGTCCC[서열번호: 6]

5'VHGS15:

GGCGGCGGCGGCTCCGGTGGTGGTGGTTCTCAGGTSMARCTGCAGSAGTCWGG[서열번호: 7]

3VHBspE1:

AATCCGGAGGAGACGGTGACCGTGGTCCCTTGGCCCCAG[서열번호: 8]

PCR을 통해 V 도메인을 증폭시키기 위해, 본 발명자들은 V_L 도메인을 플랭킹하는 프라이머 5'L1 및 3'K, 및 뒤벨 외 다수에 의해 개시된 프라이머에 기초한 중쇄을 위한 5'H1 및 3'G를 사용하였다(24).

항-CD3 scFv 단편의 cDNA는 A. Traunecker에 의해 제공되었다(25).

실시예 2: 이특이적 단쇄 단편의 제조 및 진핵발현

항-CD19 scFv-단편을 얻기 위해, 대응하는 VL- 및 VH-영역은 올리고뉴클레오티드 프라이머 쌍 5'VLB5RRV/3'VLGS15 및 5'VHGS15/3'VHBspEl 각각을 사용하여 VL-특이적 및 VH-특이적 PCR에대한 주형으로서 제공된 분리형 플라스미드 벡터로 클론되었다. 그럼으로써, 중첩된 상보서열이 PCR-생성물로 도입되고, 조합하여 뒤이어 일어나는 융합-PCR동안 15-아미노산(Gly₄Ser₁)₃-링커의 코딩서열을 제조하였다. 상기 증폭단계는 프라이머 쌍 5'VLB5RRV/3'VHBspEl에 의해 수행되었으며, 결과 융합생성물(또는 항-CD19 scFv-단편)은 제한효소 EcoRV 및 BspEl에 의해 제거되었으며, FLAG/에피토프(21)없는 변형된 물질의 서열 또는 N-말단 FLAG-꼬리[1]를 갖는 항-17-1A/항-CD3 이특이적 단쇄 항체의 (ECoRI/Sall-클론된) 코딩서열을 함유하는 bluescript KS-벡터(Stratagene)로 클론되어 각각 항-CD19-특이성에 의해 항-17-1A-를 치환하고, C-말단 항-CD3 scFv-단편을 연결하는 5-아미노산(Gly₄Ser₁)₁-링커를 보존한다. 계속해서, 도메인 배열 VL_CD19-VH_CD19-VH_CD3-VL_CD3을 갖는 항-CD19/항-CD3 이특이적 단쇄 항체의 물질을 모두 코딩하는 DNA 단편이 상기 발현벡터 pEF-DHRF[1]로 각각 서브클론된 ECoRI/SalI이었다. 결과 플라스미드 DNA는 전기천공법에 의해 DHFR-불안정 CHO-세포로 형질도입되었으며: 선별, 유전자 증폭 및 단백질 제조는 기술된 [1]과 같이 실시되었다. 하기 실시예에서, bscCD19×CD3의 FLAG-함유 물질이 얻어졌다.

형질도입된 CHO 세포의 상층액으로부터 bscCD19×CD3을 정제하면 배양물 상층액 4㎎/ℓ가 얻어졌다. bsc-Ab는 [1]에 기술된 바와 같이 Ni-NTA-컬럼상에서 친화크로마토그래피에 의해 그의 C-말단 히스티딘 꼬리를 통해 정제되었다. bsc-Ab는 200mM 이미다졸의 농도에서 구별되는 피크로서 Ni-NTA 컬럼으로부터 용출되었다. SDS-Page는 bsc-Ab의 정제를 분석하기 위해 코마시 브릴리언트 블루 R250에 의해 출발함으로써 12% 겔로 Laemmli(26)에 따라 실시하였다. 결과 SDS-PAGE 분석(도 1)은 예상 크기(60kDa)의 bsc-Ab를 나타내었다.

실시예 3: bsc-AbCD19×CD3의 결합특성

CD3 및 CD19에 대한 bsc-Ab의 결합특이성은 Blin I, SKW6.4, Daudi, BJAB 및 Raji를 포함하는 다수의 다른 CD19-양성 B세포 림프종 세포계, CD3-양성 Jurkat 세포, 사람 PBMC상에서 유동 세포수측정 분석법에 의해 나타냈다.

CD19-양성 B세포계 Daudi, Raji, BJAB(Burkitt의 림프종), SKW6.4(사람 EBV 형질전환된 B세포) 및 Blin-1(전 B세포계)은 유동 세포측정 분석법 및 크롬 방출분석에 사용되었다. Jurkat은 CD3-양성 T세포계이며;BL60 및 원형질세포종 세포계 NCI 및 L363은 두 표면분자인 CD3 및 CD19에 대해 음성이다. 세포계는 10% FCS(GIBCO)에 의해 완전한 RPMI 1640(Biochrom)내에서 배양하였다.

1×10⁶개의 세포는 PBS로 세척하고, 10% 베르님문(Vernimmun)(Centeon, Marburg, Germany) 및 0.1% NaN₃를 갖는 PBS 200㎕내에서 현탁하고, 4℃에서 30분동안 배양하였다. 원심분리단계(100×g, 5분)후에, 세포는 50㎕ bscCD19×CD3(10% 베르님문 및 0.1% NaN₃을 갖는 PBSso 200㎍/㎖)내에서 30분동안 4℃에서 배양하였다. 세포를 PBS로 2회 세척했다. bsc-Ab를 검출하기 위해, His-꼬리(Dianova)에 대한 FITC-결합 항체가 사용되었다. bscCD19×CD3과 같은 발현시스템에 의해 제조되는, 불안전 bsc-Ab 17-1A×CD3 또는 His-꼬리 항체는 음성 대조군으로서 제공되었다. 유동 세포계측법은 Becton Dickinson FACScandp 의해 실시하였다. CD19 또는 CD3을 모두 발현하는 BL60 세포상에서 결합이 검출되지 않았다(도 2).

실시예 4: CD19-양성 림프종 세포에 대한 bsc-AbCD19×CD3의 세포독성 활성

bscCD19×CD3항체는 ⁵¹Cr 방출 분석에서 여러 림프종 세포계에 대해 매우 세포독성을 가진다는 것이 입증되었다(도 3). 유효물질 세포로서 사람 말초혈액 단핵세포(PBMC)는 트롬보사이트를 제거하기 위한 지속적인 100×g 원심분리 단계에 의해 Lymphoprep^TM(Nycomed) 구배 원심분리를 사용하여 무작위 주개의 새 버피 코트로부터 분리하였다. CD19-양성 B세포는 Dynabeads(상표명) M-450 CD19(Dynal)를 사용하여 소모시켰다. 소모된 세포군집은 유동세포계측법(Becton Dickinson)에 의해 분석하였으며, 이는 CD19-양성 세포의 99% 소모에 의해 나타났다. PBMC를 37℃에서 밤새 배양하였으며, 5% CO₂ CD19-양성 세포계(Raji, Blin 1, Daudi, BJAB, SKW6.4)를 표적 세포로 사용하였다. 세포독성은 10% FCS(GIBCO)를 갖는 RPMI 1640 완전배지를 사용하여 둥근바닥 96-웰-플레이트(Nunc)내 표준크롬 방출분석에서 측정하였다.

자극받지 않는 PBMC는 bsc-Ab 20㎕를 다른 농도로 함유하는 각 웰에 80㎕ 배지의 부피로 첨가하였다. 그후, ⁵¹Cr-표지된 표적 세포(1×10⁴) 100㎕를 첨가하고, 플레이트를 100×g에서 3분동안 원심분리하고, 37℃의 5% CO₂에서 4시간동안 배양하였다. 추가의 원심분리 단계 후에, 50㎕ 상층액을 제거하고, γ 카운터에서 방출된 ⁵¹Cr에 대해 분석하였다(TopCount, Canberra Packard).

자발적인 방출은 유효인자 세포 또는 항체없이 표적 세포를 배양함으로써 측정되고, 최대 방출은 10% TritonX-100을 갖는 표적 세포를 배양함으로써 측정되었다. 유효인자 세포를 갖지 않는 bscAb를 갖는 표적 세포를 배양하면 측정할 수 있는 분해율이 얻어지지 않았다. 특이적 분해율은 이특이적 방출율(%)=[(실험적 방출(cpm))-(자발적 방출(cpm))]/[(최대 방출(cpm))-(자발적 방출(cpm))]에 따라 계산되었다. 모든 실험은 3회 반복되어 실시되었다. 3회 실시시 SD는 모든 실험에서 6% 이하이다. 대략적인 생체내 조건까지 본 발명자들은 유효인자 세포로서 건강한 주개로부터의 자극받지 않은 PBMC를 사용하였다. 4시간 이내의 세포독성의 급속한 유도는 T세포 전자극 프로토콜없이 관찰될 수 있었다. 대조군으로서, 다른 종양특이성을 갖지만, bscCD19×CD3과 같은 시스템에 의해 발생된 bsc-항체(bsc17-1A×CD3)는 배지 성분보다 분해활성을 상당히 나타내지 않았다. 그리고, 타겟 세포로서 CD19를 발현하지 않는 원형질세포종 세포계 NCI 및 L363을 사용하면 세포독성이 관찰될 수 없었다(도 4). CD19-특이적 친 단일클론 항체 HD37의 양을 증가시켜 사용한 비교분석에서, bscCD19×CD3의 세포독성 활성은 거의 완전히 차단될 수 있었다(도 5). 상기 대조군은 bscCD19×CD3-매개 세포독성 효과가 항원-특이적이라는 것을 보여주었다. bscCD19×CD3 항체가 CD19-양성 표적 세포를 죽이는 방법인 분자기작에 대한 보다 상세한 정보를 얻기 위해, 본 발명자들은 EGTA에 의한 bscCD19×CD3-매개 세포독성을 차단하기 위해 시도하였다. 도 6에 도시된 바와 같이, bscCD19×CD3의 세포독성 활성은 특이적 분해가 항체 자체의 (예를 들어, 아포프토시스-유도성) 직접적인 효과보다는 (퍼포린-경로를 통한) T세포-매개 효과라는 것을 보여주는 EGTA에 의해 완전히 차단될 수 있었다. 1ng/㎖ 이하의 항체농도에서도 자극받지 않은 T세포를 사용하면, Blin-1 세포에 대한 상당한 세포독성 효과가 관찰될 수 있었다(도 7). 비교적 낮은 E:T 비율(5:1; 2.5:1) 및 10-100pg/㎖의 매우 낮은 항체농도에서도 bscCD19×CD3 항체는 비자극 T세포의 특이적 세포독성 활성을 급속도로 유도할 수 있었다(도 7). 반대로, 잡종-림프잡종 세포종 기술(5-7, 27)에 의해 발생된 종래의 이특이적 CD19×CD3 항체는 3000ng/㎖ 이하의 농도에서도 상기 조건하에서 상당한 세포독성 활성을 나타내지 않았다(도 7). 상기 종래의 이특이적 항체는 논문(5-7, 27)과 일치하는 특이적 T세포 세포독성(도시되지 않음)을 유도학 ldnl해 약 100ng/㎖의 높은 항체농도 및 추가의 T세포 전자극을 필요로 한다.

실시예 5: bscCD19×CD3의 세포독성 활성을 통한 자가조직 T세포에 의한 일차(악성) B-세포의 소모

일차 악성 B-세포상에서 bscCD19×CD3의 세포독성 활성을 평가하기 위해, B-CLL(B-세포 유도성 만성 임파성 백혈병)을 앓는 환자의 말초혈액(PBMC)에서의 단핵세포를 피콜(Picoll) 밀도구배 원심분리에 의해 분리하였다. 상기 세포들을 10% FCS 및 선택적으로 60U/㎖ IL-2를 갖는 RPMI 1640 배지내 37℃/5% CO₂에서 5일동안 bscCD19×CD3의 존재 또는 부재하에서 연속배양하였다. 유동 세포계측 분석은 상기 특정 NHL(비-호지킨 림프종)-(bscCD19×CD3으로 후에 조직치료받은; 실시예 7)환자의 말초혈액 임파구(PBL)가 92.6% CD19-양성 B-세포(=표적 세포) 및 7.4% CD3-양성 T-임파구(=유효인자 세포)를 2.6:4.8의 CD4/CD8 T-세포비율로 포함한다는 것을 보여주었다. 상기 CD19-양성 B-세포의 대부분은 악성 세포들로 구성되어 있다. 3×10⁶PBL/웰 ㎖을 24-웰 조직배양물 플레이트에 각각 1㎖의 부피로 심었다. 0.5㎍/㎖의 농도에서 부적절한 이특이적 단쇄 항체 bsc17-1A×CD3(1)을갖는 배양물 배지 플러스 IL-1 및 배양물 배지 플러스 IL-2를 음성 대조군으로서 제공하였다. 도 9에 도시된 바와 같이, 배양 5일후에 상기 조건하에서 CD19-양성 세포의 소모는 검출할 수 없었다. 그러나, (IL-2의 존재 또는 부재하에서) bscCD19×CD3이 0.5㎍/㎖ 또는 0.05㎍/㎖의 농도로 첨가되는 경우, 거의 모든 CD19-양성 B-세포가 죽었다. 배양된 세포는 대략 1:2 내지 1:3의 CD4/CD8 T-세포 비율로 T-임파구를 주로 포함하였다. 이는 bscCD19×CD3의 CD19-양성 B-세포에 대한 뛰어난 세포독성을 입증하며, 자가조직 T-세포에 의한 일차 B-세포의 전체소모는 추가의 T-세포자극 또는 IL-2없이도 1:10 이하의 매우 바람직하지 않은 초기 유효물질 표적 세포 비율에서 50ng/㎖의 농도에서 유도될 수 있었다.

실시예 6: 치료용 bscCD19×CD3의 정제

bscCD19×CD3은 bscCD19×CD3을 코딩하는 발현벡터(pEF-DHFR; 실시예 2 참조) 및 추가적으로 헥사히스티딘 및 FLAG 꼬리에 의해 안정하게 형질전환된 중국산 햄스터 난소(CHO) 세포내에서 제조하였다. 세포는 중간이 빈 섬유반응기(Unisyn)내 혈청-유리 배지(Rencyte)에서 배양하였다. 세포배양물 상층액 500㎖를 수집하고, 0.2㎛ 필터를 통해 멸균-여과하였다(AcroCap; Pall Gelman).

bscCD19×CD3은 알칼리성 포스파타아제(Sigma)에 결합된 마우스 항-FLAG IgG(Sigma) 및 염소-항-마우스 IgG를 사용한 웨스턴 블롯에 의해 검출 및 정량화하였다. 검출은 BCIP/NBT 시스템을 사용한 화학발광에 의해 실시하였다(Devitron). 단백질 농도는 단백질 스탠다드로서 소 IgG(Biorad)를 사용한 브래드포드(Bradford) 분석(Biorad)에 의해 측정하였다. 컬럼 프랙션의 순도는 MOPS 버퍼시스템(Novex)를 사용한 소듐 도데실 설페이트(SDS) Bis/Tris 4-12% 폴리아크릴아미드 구배 겔 전기영동(PAGE)를 감소시킴으로써 평가하였다.

동질성을 위한 bscCD19×CD3의 정제는 양이온교환 크로마토그래피, 코발트 킬레이트 친화성 크로마토그래피 및 최종단계로서 겔여과를 필요로 한다. 상기 정제단계들은 표준 프로토콜을 사용하여 실시되었다(하기 참조). 정제과정의 흐름도는 도 10에 도시되어 있다.

양이온교환 크로마토그래피: CHO세포로부터의 세포배양물 상층액은 버퍼 C의 2부피(30mM 모르폴리노에탄 설폰산[MES], 20mM NaCl, 3mM DETA, 0.3mM 벤즈아미딘 히드로클로리드, pH 5.5)와 혼합하고, 20㎖/분의 유속에서 70㎖-SP 세파로스 신속 흐름 양이온교환 컬럼(Parmacia)위에 통과시켰다. 상기 컬럼을 버퍼 A(20mM MES, 20mM NaCl, pH 5.8)로 평형화시켰다. 5컬럼 부피의 버퍼 A로 세척한후, bscCD19×CD3을 버퍼 Aso 45% 버퍼 B(20mM MES, 1M NaCl, pH 5.8)의 단계구배로 용출시켰다. 용출액은 47mM 이미다졸을 함유하는 pH 8.5의 1M Tris/HCl의 0.045부피를 수용하고, 계속해서 멸균-여과(0.2㎛; AcroCap)하였다. 양이온교환 크로마토그래피의 전형적인 용출프로필은 도 12에 도시되어 있다. bscCD19×CD3은 프랙션 6에 포함되어 있었다.

코발트 킬레이트 친화성 정제: 양이온교환 크로마토그래피로부터의 용출액은 버퍼 AO(50mM Na₂HPO₄, 400mM NaCl, pH 8.0)내에서 평형화된 10㎖-킬레이팅 세파로스 패스트 플로우 컬럼(Pharmacia)위에 2.5㎖/분의 유속으로 통과시켰다. 상기 컬럼은 0.1M 염화코발트 용액으로 예비-평형화시켰다. 33개의 컬럼 부피 버퍼 AO, 버퍼 A(50mM Na₂HPO₄, 400mM NaCl, 2mM 이미다졸, pH 6.4) 및 버퍼 Aso 0-12% 구배의 버퍼 B(50mM Na₂HPO₄, 400mM NaCl, 500mM 이미다졸, pH 6.4)로 세척한후, bscCD19×CD3을 100% 버퍼 B의 30㎖에 의해 일단계로 용출시켰다. 상기 용출액을 마크로세프(MacroSep) 장치(Pall Gelman; 10kD 차단)내에서 약 10-배 농도로 용출시켰다. 코발트 킬레이트 친화도 크로마토그래피를 위한 전형적인 용출프로필은 도 13에 도시되어 있다. bscCD19×CD3은 프랙션 No.7에서 검출되었다.

겔 여과: 코발트 킬레이트 친화도 컬럼으로부터의 진한 용출액은 인산완충액 식염수(Gibco)에 의해 평형화된 124㎖-고부하 Superdex 200컬럼(Pharmacia; prep 등급)상에서 0.75㎖/분의 유속으로 부하되었다. bscCD19×CD3은 약 55kDa에 대응하는 분자크기를 갖는 프랙션에서 용출되었다(도 14, 프랙션 No. 7). bscCD19×CD3을 포함하는 겔여과 프랙션은 5% 사람혈청 알부민(Behring)으로 보충된후, 0.1㎛ 필터(Millex; Millipore)를 통해 멸균여과되었다.

SDS-PAGE에 의해 분석되는 바와 같이, 세포배양물 상층액 및 여러 활성 컬럼 프랙션내 bscCD19×CD3의 풍부함은 도 11에 도시되어 있다. bscCD19×CD3은 세포배양물 상층액내에서 검출된 주요 단백질 밴드였다(레인 2). 사람치료에 사용되는, 고도로 정제된 항-CD19×항-CD3은 검출할 수 있는 순도를 나타내지 않았다(도 11, 레인 5).

실시예 7: B-세포 림프종 환자내 bscCD19×CD3의 임상용도

특별한 용도에 있어서, B-세포 유도성 만성 임파구 백혈구(B-CLL) 환자(A-B, 여성, 1937생)가 이특이적 단쇄 항체 bscCD19×CD3으로 치료받았다.

환자 병력 및 근본적인 원인:

환자는 1992년에 B-CLL로 진단받았다. 초기 진단시에, 질병은 여러 림프절 영역 및 비장에 감염되어 있었고; 그리고 자가면역원 용혈성 빈혈 및 면역글로불린 결핍이 관찰되었다. 환자는 잘 조절된 갑상선 노도사를 가졌으며, 갑상선기능정상 상태에서 카르비마졸 2.5㎎/d로 치료받았다.

환자는 1992년에서 1994년까지 클로람부실 및 프레드니손에 의한 화학요법을 여러주기로 받았다. 질병이 진행됨에 따라, 치료는 시클로포스파미드, 독소루비신, 빈크리스틴 및 프레드니손(CHOP, 8주기)으로 변경되었으며, 1년 이상이 지나자 질병이 완화되었다. 다시 재발한후에, 환자는 CHOP의 다른 6주기를 받고, 클로람부실 및 프레드니손을 받고, 클로란부실을 단독으로 받았으나 질병개선에 어떠한 영향도 주지 않았다. 1998년 12월에, 환자의 진행성 비장확대를 조절하기 위해 비장을 조사하였다. 환자는 다중감염성 합병증으로 심각한 골수저하에 걸렸다. 그녀의 빈혈증 및 혈소판감소증은 적혈구 세포 및 혈소판 대체물의 빈번한 수혈을 필요로 했다.

질병의 진행과 손상된 골수기능으로 인해, 보다 진행성이거나 또는 고-투여량의 화학요법을 환자에게 적용하지 않았다. B-CLL에서 리툭시맵(rituximab)의 효능은 아직까지 명확하게 입증되지 않았기 때문에, 항-CD20 항체 리툭시맵에 의한 치료는 적당하지 않았다.

FACS 분석은 환자의 말초혈액세포의 95%가 CD19 양성 세포인 반면에, 세포의 77%가 CD20 항원이라는 것을 밝혔다. bscCD19×CD3을 갖는 환자의 말초혈액 세포를 배양하면 CD19-양성 B-세포의 현저한 감소를 나타냈다(실시예 5 참조). 그러므로, 의사들은 특별한 용도로서 새로운 bscCD19×CD3으로 환자를 치료하기로 결정했다. 환자는 화합물의 신규성 및 잠재적인 위험 및 상기 치료의 잇점에 대해서 상세히 설명들었다. 그녀는 그 설명을 완전히 이해하고, 그 특별한 사용에 대한 동의서에 서명했다.

임상 투여의 설명:

치료를 시작하기 전에, 환자는 임상조사와 광범위한 진단과정을 받아 질병의 정도를 확인하고, 추가의 위험요인을 배제시켰다. 환자는 심혈관 손상 또는 bscCD19×CD3을 사용하는데 방해가 되는 기타 합병증이 없이 빈혈, 혈소판감소증 및 중량손실을 갖는 적당한 임상조건에 있었다. 제1 치료전날밤동안 환자는 편두통에 시달렸다. bscCD19×CD3를 투여하는동안 환자는 집중적인 간호하에 병동에 수용되어 발생할 수 있는 응급시에 신속한 치료를 대비하였다. 심각한 사이토킨 반응 및 종양분해의 복잡화를 방지하기 위해, 환자는 오메프라졸(omeprazol)(Antra(상표명)) 알로퓨리놀(allopurinol) 300㎎ 뿐만 아니라 클레마스틴(clemastine, Tavegil(상표명)) 2㎎ 및 시메티딘(cimetidine, Tagamet(상표명)) 200㎎의 예방 Ⅳ 투여를 받았다.

치료 및 추적검사기간동안 알칼리화 및 헤파린화를 실시하였다. 그리고, 환자에게 모든 필요한 대중요법을 실시하였다.

생화학적, 혈액성 및 면역성 변수를 알아내기 위해, 약물투여전에 그리고 약물투여동안 혈액샘플을 채취하였다.

bscCD19×CD3의 첫번째 투여(1999년 4월 14일):

환자에게 5% 사람혈청 알부민(HSA)을 함유하는 등장성 인산완충액내 20분-주입으로서 bscCD19×CD3 3㎍을 첫번째 투여하였다. 주입동안, 환자는 부작용이 없었다. 주입후 1시간후, 환자는 약 5분동안 오한을 느낀후 땀을 흘렸으며, 혈압이 약 10mmHg까지 약간 감소하고, 체온이 몇시간동안 +0.5℃ 정도 약간 높아졌다. 그리고, 그녀의 두통은 약간 악화되었다. 환자는 Tavegil(상표명) 2㎎, 프레드니솔론(Solu-Decortin(상표명) 250㎎ 및 페티딘(pethidine, Dolatin(상표명)) 50㎎에 의해 추가치료받았다. 당일날, 모든 증상들은 후유증없이 해제되었다.

bscCD19×CD3의 두번째 투여(1999년 4월 15일):

같은 상태하에서 1일후 bscCD19×CD3 10㎍을 두번째로 투여받았다. 주입후 약 1시간후, 환자는 뚜렷한 오한을 느끼고, 열(39.2℃)이 나고, 경미한 호흡항진 및 혈압강하 반응이 일어났다. 환자는 Tavegil 2㎎, Tagamet 200㎎ 및 Solu-Decortin 300㎎ 및 피리트라미드(Dipidolor(상표명)) 15㎎으로 치료받았다. 그녀의 심혈관기능을 안정화시키기 위해, 환자는 도파민을 주사받고, 부피대체(volume substitution)를 받았다. 상기 치료후, 증상은 뚜렷하게 감소되었다. 그럼에도 불구하고, 환자는 밤새 심장학과에 옮겨져 응급시에 바이탈 사인을 측정하고, 응급대비를 하였다. 환자는 추가의 합병증없이 다음날 아침 보통병동으로 옮겨졌다.

다음 3일동안 환자는 아열성 체온(약 37.2℃)을 가졌으며, 두번째 투여하고 1일후 약간의 흉막유출이 있었으며(1999년 4월 16일), 하지에 약간의 부종이 있었다(1999년 4월 18일). 심혈관 기능은 안정하게 유지되었으며, 실험실 평가는 bscCD19×CD3의 두번째 투여후 γ-글루타밀트랜스퍼라아제가 증가하는것 외에 안전성에 관련된 뚜렷한 변화가 없었다(도 15).

bscCD19×CD3는 환자에 의해 내성이 있고, 부작용이 증상에 관한 치료에 의해 조절될 수 있었기 때문에, 신규 bscCD19×CD3의 투여를 상기 환자에게 계속할 것이다.

bscCD19×CD3의 임상 및 면역학적 효능:

임상결과:

bscCD19×CD3의 두번째 투여후 1일 및 4일후에 비장 및 5개의 복부 및 겨드랑이 림프절의 초음파 시험을 실시하였다. 10㎍ 투여후 1일후(1999년 4월 16일)에, 비장 뿐만 아니라 림프절에 기초 평가에 비해 약 20% 수축이 이미 나타났다. 이는 1999년 4월 19일에 두번째 초음파 평가에서 확인되었다. 비장의 중량은 350g까지 감소되었다(1999년 4월 19일에 기초 1630g으로부터 1280g으로 감소)(표 1; 도 16).

혈액학 결과:

주로 악성인 B-세포를 포함하는, 백혈구세포의 수는 치료과정동안 추적검사일동안 감소되었다(표 2; 도 17). C-반응성 단백질(CRP)는 T-세포 활성화 및 전-염증 사이토킨의 효능을 반영하는 급성 단계반응 단백질이다. 이는 bscCD19×CD3 10㎍을 투여후 현저하게 증가되었으며, 다음 3일의 관찰동안 지속적으로 감소되었다(표 2; 도 18).

면역학 결과:

화합물의 투여에 대한 급성면역반응을 반영하는 혈청 사이토킨의 수준은 화합물의 투여전 및 투여후 여러 간격에 걸쳐 측정되었다. 사이토킨 및 가용성 IL-1 수용체의 혈청수준은 제조회사의 소개에 따라 정량적인 ELISA 분석에 의해 측정되었다.

종양괴사인사 TNF-α는 bscCD19×CD3을 투여한후 1시간이내에 투여량-의존적인 방법에서 상당히 증가하였다(도 19).

인터류킨 6(IL-6) 및 인터류킨 8(I-8)은 또한 상당하게, 그리고 투여량의존적으로 증가하였다. 그들의 최대수준은 bscCD19×CD3 투여후 2 내지 4시간후에 관찰되었다(도 20, 21). 모든 사이토킨은 몇시간이내에 기초 수준으로 전환되었다.

가용성 IL-2 수용체는 IL-2 수용체를 발현하는 악성 B-세포의 질량에 의해 설명될 수 있는 기초상태에서 이미 높아졌다. bscCD19×CD3을 투여한후, 가용성 IL-2 수용체는 증가되었으며, 이는 유효인자 세포의 활성화를 의미한다(도 22).

결과:

저반응성 B-CLL 환자에게 bscCD19×CD3을 안전하게 투여하였다. 3㎍ 및 10㎍의 투여량에서 bscCD19×CD3의 허용성은 적당했으며, 예방측정 및 증상치료에 의해 잘 조절될 수 있었다.

초음파 시험에서 나타난 바와 같이, bscCD19×CD3은 환자의 이미 확대된 비장과 림프절의 수축을 야기하였다. 비장과 림프절의 확대는 악성 B-세포에 의한 침입에 의해 야기되기 때문에, 수축은 bscCD19×CD3의 투여결과로서 악성 B-세포의 파괴를 반영한다.

당업계에 공지된 기타 이특이적 CD19×CD3 항체와 대조하는데 있어서, 본 발명의 이특이적 CD19×CD3 항체(bscCD19×CD3)는 악성 B-세포에 의해 침입된 림프기관의 수축에 의해 측정되는 바와 같이, B-세포 유도성 비-호지킨 림프종에 있어서 임상효능을 나타낸다. 유리하게, bscCD19×CD3은 조직적인 투여후 잘 견디는 낮은 투여량으로 임상적으로 효과적이라는 것을 입증한다. 따라서, bscCD19×CD3의 임상효능은 생체외에서 실험된 바와 같이 그의 예외적인 세포독성 활성을 확인시켜준다.

[표 1]B-세포 림프종 환자내 림프절과 비장의 크기에 bscCD19×CD3이 미치는 효과

세 복부 림프절, 왼쪽 및 오른쪽 겨드랑이 림프절의 크기 및 비장의 크기는 도시바 SSA100을 사용한 음파 홀로그래피에 의해 측정하였다. 크기는 3개의 치수에서 ㎜로 표시한다. 비장의 중량은 그의 치수 및 초음파 밀도로부터 계산하였다.

[표 2]bscCD19×CD3에 의한 치료에 대한 선택된 마커의 혈액 레벨

γ-글루타밀 트랜스퍼라아제(GGT), 락테이트 탈수소효소(LDH) 및 C-반응성 단백질(CRP)의 혈액 레벨은 표준 임상 생화학 방법에 의해 측정하였으며, 단위/㎖(GGT), 단위/ℓ(LDH) 및 ㎎/㎗(CRP)로 표현한다. 백혈구수는 기가포인트/ℓ로 표시하며, 임파구수는 전체 백혈구의 비율로서 나타낸다. 치료전인 1999년 4월 14일에 기초 수준은 제1 레인에 표시되어 있다. 4월 15일에 bscCD19×CD3에 대한 반응(4월 14일에 투여됨)은 제2 레인에 도시되어 있다. 같은 날 화합물 10㎍에 의해 제2 치료에 대한 반응은 제3 레인에 도시되어 있다. 약물치료후 4일에 선별마커의 혈액 레벨은 마지막 제4 레인에 표시되어 있다.

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본 발명은 CD19 및 CD3 항원 각각에 대해 특이적인 적어도 2개의 결합 부위를 포함하는 단쇄(單鎖) 다기능 폴리펩티드(single-chain multi-functional polypeptide)에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 바람직하게 예정된 기능을 갖는 적어도 하나의 추가 도메인을 포함하는 폴리펩티드에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 상기 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드 뿐만 아니라 상기 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터 및 이들에 의해 형질전환된 숙주세포 및 상기 폴리펩티드를 제조하는데 사용되는 이들의 용도에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 또는 벡터 중 어느 하나를 포함하는 조성물, 바람직하게는 치료용 및 진단용 (약학) 조성물에 관한 것이다. 본 발명의 또 다른 목적은 바람직하게 비(非)-호지킨 림프종과 같은 B-세포 악성 종양에 대한 면역요법을 위한 약학 조성물을 제조하기 위해 상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 및 벡터를 사용하는 것이다.

본 명세서에 전반적으로 여러 문헌들이 인용되어 있다. 각 인용문헌(제조회사의 명세서, 소개 등을 포함)은 이후에 참고문헌으로 통합되지만; 인용문헌중 어느 것도 본 발명의 선행기술을 대신하는 것은 아니다.

의학적 중요성에도 불구하고, 비-호지킨 림프종과 같은 B-세포 매개질병에 대한 연구는 상기 질병들을 치료하기 위한 소수의 임상적으로 사용가능한 데이터 및 종래 접근만 산출하여 지루하고 재미없고 및/또는 퇴보할 큰 위험도 존재한다. 예를 들어, 고급 비-호지킨 림프종 일차치료로서 고투여량 화학요법이 전반적으로 생존율을 향상시킴에도 불구하고, 환자의 약 50%가 여전히 이 질병으로 사망한다(2-4). 그리고, 저급 비-호지킨 림프종-유사 만성 림프성 백혈병 및 맨틀세포 림프종은 여전히 불치병이다. 이는 면역요법과 같은 선택적인 계획을 위한 연구의 동기가 되어왔다. CD 항원에 의해 정의된 세포표면분자에 대한 항체는 치료제을 개발하기 위한 유일한 기회를 대표한다.

특정 CD 항원의 발현은 특이 계통 림프조혈세포로 매우 제한되며, 과거 수년동안 림프특이 항원에 대한 항체는 생체내 또는 동물모델내에서 유효한 치료법을 개발하는데 사용되어왔다(5-13). 상기와 관련하여, CD19는 매우 유용한 타겟인 것으로 증명되었다. CD19는 전체 B계통에서 B전세포로부터 성숙 B세포로 발현되며, 제한되지 않는다면, 모든 림프종 세포상에 균일하게 발현되며, 간세포에 부재한다(8, 14). 관심있는 방법은 T세포에서 CD19에 대한 특이성 및 CD 항원에 대한 특이성을 갖는 이특이적 항체를 적용하는 것이다. 그러나, 보다 유용한 이특이적 항체는 만족스러운 생물학적 활성을 나타내기 위해 낮은 T-세포 세포독성을 가지고, 동시자극제를 필요로 한다.

따라서, 본 발명의 기초가 되는 기술적 문제는 여러 형태의 비-호지킨 림프종과 같은 B-세포 매개 질병을 치료하는데 유용한 수단 및 방법을 제공하는 것이다. 상기 문제의 해결방안은 청구의 범위에 특징적인 구체예를 제공함으로써 해소된다.

따라서, 본 발명은

(a)CD19 항원을 특이적으로 인식하는 면역글로불린 사슬 또는 항체의 결합 부위로 구성된 제1 도메인; 및

(b)CD3 항원을 특이적으로 인식하는 면역글로불린 사슬 또는 항체의 결합 부위로 구성된 제2 도메인으로 이루어진 단쇄 다기능 폴리펩티드에 관한 것이다.

본 발명에 따른 "제1 도메인" 및 "제2 도메인"이라는 용어는 1개의 결합 부위가 pan B세포 마커 CD19를 향하고, 여러 악성 B세포위에서 균일하게 발현되며, 다른 결합 부위는 사람 T세포의 CD3 항원을 향한다는 것을 의미한다.

본 발명에 따라 사용되는 "결합 부위"라는 용어는 토착 항체와 유사한 에피토프에 특이적으로 결합할 수 있는 3차원 구조, 자유 scFv 단편 또는 그의 대응하는 면역글로불린 사슬중 하나, 바람직하게 V_H 사슬로 구성된 도메인을 의미한다. 따라서, 상기 도메인은 항체 또는 면역글로불린 사슬의 V_H 및/또는 V_L 도메인, 바람직하게 적어도 V_H 도메인으로 구성될 수 있다. 한편, 본 발명의 폴리펩티드내에 포함되어 있는 상기 결합 부위는 CD19 및 CD3 항원을 각각 인식할 수 있는 항체 또는 면역글로불린 사슬의 적어도 하나의 상보성 결정영역(CDR)을 포함할 수 있다. 상기와 관련하여, 본 발명의 폴리펩티드내에 존재하는 결합 부위의 도메인은 항체로부터 유도될 뿐만 아니라 자연발생 표면수용체 또는 리간드와 같은 기타 CD19 또는 CD3 결합단백질로부터 유도될 수 있다. 본 발명에 따라, 상기 결합 부위는 도메인내에 포함되어 있다.

본 명세서에 사용된 "다기능 폴리펩티드"라는 용어는 다른 기원, 즉 2개의 다른 분자들, 선택적으로 상기 기원중 적어도 2개가 결합 부위를 특이화하는 다른 종류로부터 유도된 적어도 2개의 아미노산 서열로 구성된 폴리펩티드를 의미한다. 따라서, 상기 결합 부위는 상기 다기능 펩티드의 기능 또는 적어도 일부기능을 특이화한다. 상기 폴리펩티드는 예를 들어 이특이적 단쇄 (bsc)항체를 포함한다.

본 발명에 따라 사용된 "단쇄"라는 용어는 폴리펩티드의 상기 제1 및 제2 도메인이 바람직하게, 핵산분자에 의해 코딩가능한 동시-선형 아미노산 서열의 형태로 공유결합된다는 것을 의미한다.

CD19는 전 B세포 및 성숙 B세포와 같이 B계통에서 발현된 항원을 의미하며, 소멸되지 않는다면 모든 림프종 세포상에 균일하게 발현되며, 간세포가 부재한다(8, 14).

CD3은 다중분자 T-세포 수용체 복합체의 일부로서 T-세포상에 발현되고, 3개의 다른 사슬 CD3ε, CD3δ 및 CD3γ로 구성된 항원을 의미한다. 부동화 항-CD3-항체에 의해 T-세포상에 CD3 클루스터를 형성하면, T-세포 수용체와 결합하는 것과 유사한 T-세포 활성화를 일으키지만, 그의 클론 대표적인 특이성과는 무관하다. 실제로, 대부분의 항-CD3-항체가 CD3ε-사슬을 인식한다.

CD19 또는 CD3 항원을 특이적으로 인식하는 항체는 (24), (25) 및 (43)과 같은 종래기술에 각각 기술되어 있으며, 당분야에 공지된 종래방법에 의해 발생될 수 있다.

MHC-독립적 방법에서 림프종 세포상에서 T-세포 세포독성을 재표적화하는, 단쇄 형태로 있지 않는 이특이적 CD19×CD3 항체는 이미 생체외(5, 6, 9-11, 13, 43), 동물모델(7, 28) 뿐만 아니라 일부 시험적 임상시험(12, 29, 30)에서 유효한 것으로 나타나 있다. 지금까지는 상기 항체들이 잡종-림프잡종세포 기술에 의해, 단일클론 항체(31)를 공유결합함으로써, 또는 디아바디(diabody) 접근(43)에 의해 형성되었다. 보다 확장된 임상연구는 많은 투여량이 가해져야 하도록 상기 항체들이 낮은 생물학적 활성을 갖고, 유리한 치료적 효과를 위해서 항체만 제공하지 않는다는 사실에 의해 제한되어왔다. 그리고, 임상등급물질의 유용성도 제한되었다.

특정이론에 구애받지 않고, 상기와 같은 이특이적 항체-유사 구성을 사용하여, 이특이적 CD19×CD3 항체와 같은 발생적 폴리펩티드는 보통 T-세포 전-자극 및/또는 동시-자극을 할 필요없이 세포독성 T-림프구를 보강함으로써 CD19-양성 표적 세포를 파괴할 수 있는 것으로 믿어지고 있다. 이는 기타 분자구성에 따라 제조된 모든 공지된 이특이적 CD19×CD3 항체와 두드러진 차이를 나타내며, 이특이적 단쇄 항체와 같은 구조물에 사용되는 특정 CD19-항체 또는 CD3-항체 종류에 보통 의존하지 않는다. T-세포 전- 및/또는 동시-자극으로부터의 무관함은 실시예에 기술된 특정 CD19×CD3 이특이적 항체에 의해 예시된 바와 같이 본 발명의 폴리펩티드에 의해 매개되는 매우 높은 세포독성에 실제로 공헌할 수 있다.

본 발명의 폴리펩티드의 추가의 이로운 성질은 그의 작고, 비교적 소형의 구조로 인해 제조하고 정제하기 쉬워서, 세균 봉입체로부터 재생함으로써 또는 화학결합에 의해 낮은 수득율, 불량 부산물의 발생 또는 잡종-림프잡종 세포종으로부터 제조된 CD19×CD3 특이 항체에 대해 보고된 어려운 정제과정(15-19)의 문제점을 모면할 수 있다는 점이다. 하기에서, 본 발명의 폴리펩티드의 유리하고 기대치못한 성질들이 본 발명의 넓은 개념을 상술하는, 본 발명의 일부 바람직한 구체예를 포함하는 첨부 실시예를 제한하지 않는 방법으로 논의될 것이다.

본 발명에 따라, CHO 세포에서 발현에 의해 재조합 이특이적 CD19×CD3 단쇄 항체를 발생시키기 위해 재조합 이특이적 단쇄 항체(1)를 제조하기 위해 개발된 진핵발현시스템이 사용되었다. 전체적으로 기능적인 항체는 Ni-NTA 크로마토그래피 컬럼상에서 그의 C-말단 히스티딘 꼬리에 의해 배양물 상층액으로부터 쉽게 정제되었다. CD19 및 CD3에 대한 특이적인 결합은 FACS 분석에 의해 입증되었다. 본 발명의 결과 bscCD19×CD3(비특이적 단쇄 CD19 ×CD3) 분자는 예상치못한 성질들을 나타냈다:

- bscCD19×CD3은 생체외 및 생체내에서 높은 림프종 방향 T 세포 세포독성을 유도했다. 5:1 내지 2.5:1의 낮은 E(작동체):T(타겟) 비율 및 10-100pg/㎖의 매우 낮은 농도에서도 림프종 세포계의 상당한 특이적 분해가 관찰되었다. 그리고, 특별한 용도에서 본 발명의 bscCD19×CD3 분자 3㎍ 내지 10㎍은 의학의 상당한 향상을 나타냈다. 여러 나노그램/㎖ 또는 ㎍/㎖의 범위에서 세포독성 활성을 나타내는 (또한 다른 구조를 나타내는)디아바디 접근 또는 잡종-림프잡종 세포종 기술에 의해 제조된 공지의 CD19×CD3 항체에 비해, 본 발명의 bscCD19×CD3은 실시예 4, 5 및 7에 개시되어 있는 바와 같이 보다 효과있는 것처럼 보인다(5-7, 27, 43).

-본 발명의 bscCD19×CD3의 저농도는 T세포 전자극의 필요없이 낮은 E:T 비율에서 신속한 림프종 방향 세포독성(4시간후)을 유도할 수 있었다. 반대로, 종래의 CD19×CD3 이특이적 항체(5-7, 27)는 3000ng/㎖ 이하의 고농도에서도 상기 조건(즉, T세포 전자극없음, 낮은 E:T 비율)하에서 상당한 세포독성 활성을 나타내지 않았다. 전자극없이 세포독성 활성을 유도하는 것이 또한 종래의 기타 CD19×CD3 항체의 경우에 보호되어 있어도, 상기 효과는 본 발명의 bscCD19×CD3(100pg/㎖, 2.5:1)에 비해 높은 농도 및 높은 E:T 비율(100ng/㎖, 27:1)에서만 얻어졌다. 그리고 상기 종래 항체의 세포독성 효과는 이특이적 항체 자체에 의해 자극후 1일후에만 관찰되었지만, 본 발명의 bscCD19×CD3은 4시간후에 이미 림프종-방향 세포독성을 유도했다. 상기 낮은 농도 및 E:T 비율에서, 자극받지 않은 T세포의 급속한 특이 세포독성 활성은 지금까지 사용된 기타 이특이적 항체에 대해 알려져 있지 않다. 최근에, 항-p185HER2/항-CD3 이특이적 F(ab)₂ 항체가 본 발명의 bscCD19×CD3과 유사한 농도에서 세포독성 활성을 유도하는 것으로 나타났지만, 상기 항체는 IL-2(32)에 의한 24시간 전자극을 필요로 한다. 따라서, 본 발명의 bscCD19×CD3 항체는 공지된 기타 이특이적 항체로부터 상기 분자를 구별하는 유일한 세포독성 성질을 나타낸다.

본 발명의 bscCD19×CD3은 하기의 사실에 의해 입증되는 항원특이적인 세포독성 효과를 매개한다:

-CD19 항원을 발현하지 않는 B계통의 세포계인 형질세포종 세포계 NCl 및 L363을 분해하는데 상기 항체가 실패한다는 점; 및

-림프종 세포에 대한 세포독성이 친 항-CD19 항체 HD37에 의해 차단될 수 있다는 점.(HD37 항체는 HD37 림프잡종 세포종(22)로부터 유도됨).

EGTA 완전히 차단된 bscCD19×CD3-매개 세포독성을 갖는 칼슘-상실에 의해 퍼포린-경로를 차단하는 것은 특이적 분해가 항체 자체의 직접적인 효과보다는 T세포-매개 효과라는 것을 제시한다.

본 발명에 따라 제조된 bscCD19×CD3 항체는 그의 빠르고 쉬운 제조의 가능성 뿐만 아니라 그의 상당히 높은 생물학적 활성에 관해 CD19×CD3 이특이적 항체보다 우수함으로써, 충분한 양의 고품질 임상급 물질을 얻는다.

그러므로, 본 발명의 bscCD19×CD3 분자는 임상시험에서 비-호지킨 림프종과 같은 B-세포 매개 질병을 치료하는데 있어서 이특이적 항체의 치료적 잇점을 입증하기 위한 적당한 후보물인 것으로 기대된다.

본 발명의 바람직한 구체예에서, 상기 도메인은 폴리펩티드 링커에 의해 연결된다. 상기 링커는 상기 제1 도메인과 상기 제2 도메인사이에 위치되어 있으며, 상기 폴리펩티드 링커는 바람직하게, 복수의 친수성 펩티드-결합 아미노산을 포함하며, 상기 제1 도메인의 N-말단과 상기 제2 도메인의 C-말단을 연결한다.

본 발명의 추가의 바람직한 구체예에서, 상기 폴리펩티드의 제1 및/또는 제2 도메인은 자연항체로부터의 V_H 및 V_L 영역을 모방하거나 또는 대응한다. 본 발명의 폴리펩티드를 위한 결합 부위를 제공하는 항체는 예를 들어, 단일클론 항체, 다중클론 항체, 키메라 항체, 교화 항체, 이특이적 항체, 합성 항체, 항체 단편, 가령 Fab, Fv 또는 ScFv 단편 등 또는 상기중 어느 하나의 화학적으로 변형된 유도체일 수 있다. 단일클론 항체는 예를 들어, Koeller 및 Milstein, Nature 256(1975), 495 및 Galfre, Meth. Enzymol. 73(1981), 3에 기술된 기술에 의해 제조될 수 있으며, 이는 종래에 개발된 변형법에 의해 면역화 동물로부터 유도된 비장세포에 마우스 골수종 세포를 주입시키는 단계를 포함한다.

그리고, 상기 항원에 대한 그의 항체 또는 단편은 Harlow 및 Lane "Antibodies, A Laboratory Manual", CSH Press, Cold Spring Harbor, 1988에 기술된 방법을 사용하여 얻을 수 있다. 항체는 사람을 포함한 여러 종족에서 얻어질 수 있다. 상기 항체의 유도체가 파지 표시기술에 의해 얻어지는 경우, BIAcore 시스템에 사용되는 표면 플라즈몬 공명은 CD19 또는 CD3 항원의 에피토프에 결합하는 파지 항체의 효과를 증가시키는데 사용될 수 있다(Schier, Human Antibodies Hybridomas 7 (1996), 97-105; Malmborg, J. Immunol. Methods 183 (1995), 7-13). 키메라 항체의 제조는 예를 들어 국제공개 WO 89/09622에 기술되어 있다. 교화 항체를 제조하는 방법은 유럽특허 EP-A1 0 239 400 및 국제공개 WO 90/07861에 기술되어 있다. 본 발명에 따라 사용되는 항체의 다른 기원은 소위 이종항체이다. 마우스내 교화항체와 같은 이종항체를 제조하기 위한 일반적인 방법은 국제공개 WO91/10741, WO 94/02602, WO 96/34096 및 WO 96/33735에 기술되어 있다.

본 발명에 따라 사용되는 항체 또는 그의 대응하는 면역글로불린 사슬은 아미노산 결실, 삽입, 치환, 첨가 및/또는 재조합과 같이 당업계에 공지된 종래기술 및/또는 당업계에 공지된 기타 변형법을 단독으로 또는 조합하여 사용하여 추가로 변형될 수 있다. 면역글로불린 사슬의 아미노산 서열을 이루는 DNA 서열에 있어서의 변형을 도입하는 방법은 당업계에 보통의 기술을 가진 자들에게 잘 공지되어 있으며; Sambrook, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1989) N.Y.를 참조한다. 변형은 핵산 수준에서 실시하는 것이 바람직하다.

본 발명의 추가의 바람직한 구체예에서, 상기 폴리펩티드내 상기 도메인중 적어도 하나는 항체의 다양한 영역중 단쇄 단편이다.

잘 알려져 있는 바와 같이, 완전한 항원 인식 및 결합 부위를 포함하는 최소 항체 단편(Fv)은 비-공유결합 조합에서, 하나의 중쇄 및 하나의 경쇄 변이형 도메인(V_H 및 V_L)의 이량체로 구성된다. 자연항체에서 발견된 것에 대응하는 상기 구조에 있어서, 각 변형가능한 도메인중 3개의 상보성 결정영역(CDR)은 V_H-V_L 이량체의 표면상의 항원결합 부위를 결정하기 위해 상호반응한다. 일괄적으로, 6개의 CDR은 항체에 항원결합 특이성을 제공한다. CDR 옆에 위치한 프레임워크(FR)는 사람 및 마우스와 다른 종족의 토착 면역글로불린내에서 본래 보존되어 있는 삼차 구조를 가진다. 상기 FR은 그의 적당한 배향에서 CDR을 고정시키기 위해 제공된다. 불변의 도메인은 결합기능에는 필요하지 않지만, V_H-V_L 상호반응을 안정화하는데 도움이 된다. 단일의 변형가능한 도메인(또는 항원에 대해 특이적인 3개의 CDR만 포함하는 Fv의 반)은 전체 결합 부위보다 낮은 친화도에서 항원을 인식하고 결합하는 능력을 가진다(Painter, Biochem. 11(1972), 1327-1337). 따라서, 본 발명의 폴리펩티드의 결합 부위의 상기 도메인은 같거나 또는 다른 면역글로불린의 V_H-V_L, V_H-V_H 또는 V_L-V_L 도메인 쌍일 수 있다. 폴리펩티드 사슬내 V_H 및 V_L 도메인의 순서는 본 발명에서는 중요하지 않으며, 도메인의 순서는 기능의 손실없이 보통 역으로도 가능하다. 그러나, 항원 결합 부위가 적당하게 겹칠 수 있도록 V_H 및 V_L 도메인이 배열되는 것이 중요하다.

본 발명의 폴리펩티드의 바람직한 구체예에서, 상기 도메인은 순서 V_LCD19-V_HCD19-V_HCD3-V_LCD3로 배열되어 있으며, "V_L 및 "V_H는 특이적 항-CD19 및 항-CD3 항체의 변형가능한 도메인의 경쇄 및 중쇄을 의미한다.

상기와 같이, 상기 결합 부위는 상기 도메인사이에 위치되어 있는 폴리펩티드 링커에 의해 구부릴 수 있는 링커에 의해 연결되는 것이 바람직하며, 상기 폴리펩티드 링커는 본 발명의 폴리펩티드가 수용액내에 위치되어 있는 경우에 결합하기에 적당한 구조를 보장하는 경우에, 상기 결합 부위를 포함하는 상기 도메인 중 하나의 C-말단 끝과 상기 결합 부위를 포함하는 상기 다른 도메인의 N-말단 끝사이의 거리를 확장하기에 충분한 길이의 복수의, 친수성, 펩티드-결합 아미노산으로 구성된다. 바람직하게, 상기 폴리펩티드 링커는 다수의 글리신, 알라닌 및/또는 세린 잔기로 구성된다. 상기 폴리펩티드 링커는 아미노산 서열의 연속되는 복제본을 다수 포함하는 것이 보다 바람직하다. 보통, 폴리펩티드 링커는 15개 이상의 아미노산의 폴리펩티드 링커가 잘 작업함에도 불구하고 1 내지 15개의 아미노산으로 구성된다. 본 발명의 바람직한 구체예에서, 상기 폴리펩티드 링커는 1 내지 5개의 아미노산 잔기로 구성된다.

본 발명의 특히 바람직한 구체예에서, 본 발명의 폴리펩티드내 상기 폴리펩티드 링커는 5개의 아미노산으로 구성된다. 하기 실시예에서 입증되는 바와 같이, 상기 폴리펩티드 링커는 아미노산 서열 Gly Gly Gly Gly Ser로 구성되는 것이 바람직하다.

또다른 바람직한 구체예에서, 본 발명의 폴리펩티드의 상기 제1 도메인은 뉴클레오티드 82 내지 414(V_L) 및 뉴클레오티드 460 내지 831(V_H)로 도 8에 개시된 DNA 서열에 의해 코딩된 아미노산 서열로 구성된 V_H 및 V_L 영역의 적어도 하나의 CDR로 구성되며/또는 상기 제2 도메인은 뉴클레오티드 847 내지 1203(V_H) 및 뉴클레오티드 1258 내지 1575(V_L)로 도 8에 개시된 DNA 서열에 의해 코딩된 아미노산 서열로 구성된 V_H 및 V_L 영역의 적어도 하나의 CDR, 보다 바람직하게 2개, 가장 바람직하게 3개의 CDR을 포함하며, 선택적으로 친 항체내에서 상기 CDR과 함께 발생하는 프레임워크 영역과 조합한다. 도 8에 개시된 변형가능한 영역내에 포함된 CDR은 예를 들어, Kabat, "Sequences of Proteins of Immunological Interest"(U.S. Department of Health and Human Services, 제3판, 1983; 제4판, 1987; 제5판, 1990)에 따라 측정될 수 있다. 당업자는 그로부터 유도된 결합 부위 또는 적어도 하나의 CDR은 본 발명의 폴리펩티드의 구성을 위해 사용될 수 있다는 것을 알 것이다. 바람직하게, 상기폴리펩티드는 뉴클레오티드 82 내지 1575의 도 8에 개시된 DNA 서열에 의해 코딩된 아미노산 서열을 포함한다. 당업자는 유럽특허 EP-A1 0 451 216 및 유럽특허 EP-A1 0 549 581과 같은 당업계에 공지되어 있는 방법에 따라 본 발명의 폴리펩티드의 결합 부위가 구성될 수 있다는 것을 알 것이다.

본 발명의 폴리펩티드의 결합 부위의 도메인은 이들이 유도된 면역글로불린 사슬 또는 항체의 결합특이성과 적어도 실질적으로 동일한 특이성을 가진다. 상기 결합 부위 도메인은 CD3 항원에 대해 적어도 10^-5M^-1, 바람직하게 10⁷M^-1 이하의 결합친화도 및 CD19 항원에 대해 10¹⁰M^-1 이하 또는 그 이상의 친화도를 가질 수 있다.

본 발명의 폴리펩티드의 바람직한 구체예에서,

(a)제1 도메인의 상기 결합 부위는 적어도 약 10^-7M, 바람직하게 적어도 약 10^-9M 및 가장 바람직하게 적어도 약 10^-11M의 친화도를 가지며; 및/또는

(b)제2 도메인의 상기 결합 부위는 약 10^-7M 이하, 바람직하게 약 10^-6M 이하 및 가장 바람직하게 10^-5M의 친화도를 가진다.

상기 바람직한 구체예에 따라, 표적 세포가 고효율로 파괴되도록 CD19 항원을 인식하는 결합 부위가 표적 세포를 포획하기 위해 높은 친화도를 가지는 것이 유리하다. 한편, CD3 항원을 인식하는 결합 부위의 결합 친화도는 자연 CD3 수용체의 친화도 또는 T-세포 수용체와 그의 리간드사이의 상호반응을 위한 친화도, 즉 표적 세포 표면상의 MHC-펩티드 복합체의 순서이어야 한다. 본 발명의 다른 바람직한 구체예에서, 상기 폴리펩티드는 이특이적 단쇄 항체이다.

본 발명은 또한, 적어도 하나의 추가의 도메인으로 구성된 폴리펩티드에 관한 것이며, 상기 도메인은 공유결합 또는 비공유결합으로 결합된다.

결합은 당업계에 공지되어 있고, 상기 기술된 방법에 따른 유전적 결합에 기초할 수 있으며, 국제공개 WO 94/04686에 기술된 바와 같이 화학가교에 의해 실시될 수 있다. 본 발명의 폴리펩티드내에 존재하는 추가의 도메인은 겨합자리 도메인중 하나에 유연성 링커, 유리하게 폴리펩티드 링커를 결합시킬 수 있으며, 상기 폴리펩티드가 수용액내에 위치되어 있는 경우 결합에 적합한 구조를 가정할때 상기 폴리펩티드 링커는 상기 도메인중 하나의 C-말단과 상기 도메인중 다른 하나의 N-말단사이의 거리를 확장시키기에 충분한 길이의 다수의, 친수성 펩티드-결합 아미노산을 포함한다. 바람직하게, 상기 폴리펩티드 링커는 상기 구체예에 기술된 바와 같은 폴리펩티드 링커이다. 본 발명의 폴리펩티드는 엔테로키나아제와 같은 단백질분해효소를 위한 제거가능한 자리 또는 제거위치를 추가로 포함하며; 또한, 실시예를 참조한다.

그리고, 상기 추가의 도메인은 예정된 특이성 또는 기능을 가질 수 있다. 예를 들어, 참고문헌은 악성 세포를 파괴하거나 또는 위치시키기 위해 또는 정좌된 약물 또는 효소적 효과를 유도하기 위해 체내 특정 지점에 약물, 독소 및 효소와 같은 생화학물질을 타겟킹하는 개념으로 숙주를 포함한다. 단일클론 항체를 생화학물질에 결합시킴으로써 상기 효과를 얻을 수 있다는 것이 제시되어 있다(예를 들어, N.Y. Oxford University Press; 및 Ghose, J. Natl. Cancer Inst. 61(1978), 657-676을 참조).

본 명세서에서, 본 발명에 따른 폴리펩티드가 당업계에 공지된 종래방법에 의해 추가로 변형될 수 있다는 것도 이해된다. 이는 이종단백질로부터 유도되는 핵 정좌 신호, 트랜스활성화 도메인, DNA-결합 도메인, 호르몬-결합 도메인, 단백질 꼬리(GST, GFP, h-myc 펩티드, FLAG, HA 펩티드)와 가은 기타 기능성 아미노산 서열 및 본 발명의 폴리펩티드로 구성된 키메라 단백질을 구성한다. 실시예에 기술된 바와 같이, 본 발명의 폴리펩티드는 약 8개의 아미노산 길이의 FLAG-꼬리를 포함하는 것이 바람직하며; 도 8을 참조한다.

본 발명의 폴리펩티드는 중증근무력증, 바제도병, 갑상선 하시모토병, 또는 굿패스튜어 증후군과 같은 B-세포 관련 자가면역질병 및/또는 B-세포 림프종, B-세포 유도성 만성 임파구 백혈병(B-CLL)과 같은 B-세포 질병을 앓는 환자에 치료적으로 사용될 수 있다. 상기 요법은 본 발명의 폴리펩티드를 투여함으로써 실시될 수 있다. 상기 투여는 표지된 폴리펩티드 뿐만 아니라 표지되지 않은 폴리펩티드를 사용할 수 있다.

예를 들어, 치료제로 표지된 본 발명의 폴리펩티드가 투여될수 있었다. 상기 제제는 본 발명의 항체 또는 항원에 직접 또는 간접적으로 결합될 수 있다. 간접 결합의 한 예는 스페이서 성분을 사용하는 것이다. 상기 스페이서 성분은 차례로 불용성 또는 가용성일 수 있으며(Diener, Science 231(1986), 148), 표적 부위에서 항원으로부터 약물을 방출시킬 수 있게 하기 위해 선택될 수 있다. 면역용법을 위해 본 발명의 폴리펩티드에 결합될 수 있는 치료제의 예로는 약물, 방사성 동위원소, 렉틴 및 독소가 있다. 본 발명의 폴리펩티드에 결합될 수 있는 약물은 미토마이신 C, 다우노루비신 및 빈블라스틴과 같은 약물로서 주로 언급되는 화합물을 포함한다.

면역요법을 위해 본 발명의 방사성동위원소 결합된 폴리펩티드를 사용하는데 있어서, 특정의 동위원소가 안정성 및 방출 뿐만 아니라 백혈구 분포로서 상기 요소에 따른 것보다 바람직하다. 자가면역반응에 따라, 일부 에미터가 다른 것보다 바람직하다. 보통, α 및 β 입자-발산 방사선동위원소는 면역요법에 바람직하다. ²¹²Bi와 같은 짧은 발광, 고에너지 α 에미터가 바람직하다. 치료목적을 위해 본 발명의 폴리펩티드에 결합될 수 있는 방사성동위원소의 예로는 ¹²⁵I, ¹³¹I, ⁹⁰Y, ⁶⁷Cu, ²¹²Bi, ²¹²At, ²¹¹Pb, ⁴⁷Sc, ¹⁰⁹Pd 및 ¹⁸⁸Re가 있다.

렉틴은 특정 당성분과 결합하는 식물물질에서 보통 분리되는 단백질이다. 많은 렉틴이 또한 세포를 응집시키고 임파구를 자극할 수 있다. 그러나, 리신은 면역치료요법에 사용되는 독소 렉틴이다. 이는 독소효과를 특이적으로 전달할 수 있는 폴리펩티드에, 독소에 대해 반응할 수 있는 리신의 α-펩티드 사슬을 결합함으로써 이루어진다.

충분한 투여량에서 종종 치명적인 독소는 식물, 동물 또는 미생물에 의해 생성되는 독성 물질이다. 디프테리아 독소는 치료적으로 사용될 수 있는 디프테리아균에 의해 생성되는 물질이다. 이 독소는 적당한 조건하에서 분리될 수 있는 α 및 β 서브유닛으로 구성된다. 독소 A 성분은 본 발명의 폴리펩티드에 결합될 수 있으며, 본 발명의 폴리펩티드에 결합함으로써 근접하게 일어나는 B-세포 및 T-세포를 상호반응시킬 수 있는 특이적 전달을 위해 사용될 수 있다.

본 발명의 폴리펩티드에 결합될 수 있는 상기와 같은 다른 치료제 뿐만 아니라 생체외 생체내 치료용 프로토콜이 공지되어 있으며, 당업계에 보통의 기술을 가진 자에 의해 쉽게 확인될 수 있다. 당업자는 어디에서도 단백질 물질 자체대신에 상기 폴리펩티드 또는 그에 대응하는 벡터중 어느 하나를 코딩하는 본 발명의 폴리뉴클레오티드를 적당하게 사용할 수 있다.

따라서, 당업자는 본 발명의 폴리펩티드가 소망하는 특이성 및 생물학적 기능의 다른 폴리펩티드를 구성하기 위해 사용될 수 있다는 것을 쉽게 알 것이다. 본 발명의 폴리펩티드는 대응하는 세포신호 전달경로의 분석 및 조절을 위한 주요 기구로서 또는 암 및 자가면역질병의 특정 형태와 같은 B-세포 관련질병을 위한 새로운 치료접근방법의 개발에 있어서, 의료분야에 특히 중요한 치료적 및 과학적 역할을 할 것으로 기대된다.

본 발명의 추가의 바람직한 구체예에서, 상기 적어도 하나의 추가 도메인은 생물학적 활성에 적당한 구조를 갖는 유효인자 분자, 이온을 결합시킬 수 있는 아미노산 서열 및 고체 지지체 또는 예정된 항원에 선택적으로 결합할 수 있는 아미노산 서열로 구성된 군에서 선택된 분자를 포함한다.

바람직하게, 상기 추가의 도메인은 효소, 독소, 수용체, 결합 부위, 생합성 항체 결합 부위, 성장요소, 세포-분화요소, 림포킨, 사이토킨, 호르몬, 간접검출가능한 성분, 항-대사물질, 방사성 원자 또는 항원을 포함한다. 상기 항원은 종양 항원, 바이러스 상원, 미생물 항원, 알레르겐, 자가-항원, 바이러스, 미생물, 폴리펩티드, 펩티드 또는 다수의 종양세포일 수 있다.

그리고, 이온을 결합시킬 수 있는 상기 서열은 칼모듈린, 메탈로티오네인, 그의 기능적 단편, 또는 글루탐산, 아스파르트산, 리신 및 아르기닌 중 적어도 하나가 풍부한 아미노산 서열에서 선택되는 것이 바람직하다. 또한, 고체 지지체에 선택적으로 결합할 수 있는 상기 폴리펩티드 서열은 양성 또는 음성으로 하전된 아미노산 서열, 시스테인-함유 아미노산 서열, 아비딘, 스트렙트아비딘, 스타필로코커스 단백질 A의 기능적 단편, GST, His-꼬리, FLAG-꼬리 또는 Lex A일 수 있다. 실시예에 기술된 바와 같이, 단쇄 항체에 의해 예시화된 본 발명의 폴리펩티드는 쉽게 정제 및 검출하기 위한 N-말단 FLAG-꼬리 및/또는 C-말단 His-꼬리로 발현되었다. 실시예에 사용된 FLAG-꼬리는 8개의 아미노산으로 구성되며(도 8 참조), 본 발명에 따라 사용되는 것이 바람직하다. 그러나, 아미노산 서열 Asp-Tyr-Lys-Asp와 같이 실시예에서 사용된 FLAG의 짧은 변형물로 구성된 FLAG-꼬리가 적당하다.

상기 유효인자 분자 및 아미노산 서열은 활성 또는 그렇지 않고, 특정 세포환경에 들어가는 경우 제거될 수 있는 예비형태로 존재할 수 있다.

본 발명의 가장 바람직한 구체예에서, 상기 수용체는 T-세포 활성화에 중요한 동시자극 표면분자이거나, 또는 에피토프 결합 부위 또는 호르몬 결합 부위를 포함한다.

본 발명의 추가의 가장 바람직한 구체예에서, 상기 동시자극 표면분자는 CD80(B7-1) 또는 CD86(B7-2)이다.

아직, 추가의 구체예에서, 본 발명은 발현시에 상기 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드에 관한 것이다. 상기 폴리뉴클레오티드는 폴리펩티드의 적당한 전사 및 해독을 위해 당업계에 공지되어 있는 적당한 발현 조절서열에 융합된다.

상기 뉴클레오티드는 예를 들어, DNA, cDNA, RNA 또는 합성제조된 DNA 또는 RNA 또는 상기 폴리뉴클레오티드 단독 또는 조합을 포함하는 재조합제조 키메라 핵산분자이다. 바람직하게, 상기 폴리뉴클레오티드는 벡터의 일부이다. 상기 벡터는 적당한 숙주세포내에서 및 적당한 조건하에서 상기 벡터를 선택시키는 마커 유전자와 같은 추가의 유전자를 포함한다. 바람직하게, 본 발명의 폴리뉴클레오티드는 원핵세포 또는 진행세포내에서 발현시키는 발현 조절서열에 조작적으로 결합된다. 상기 폴리뉴클레오티드의 발현은 폴리뉴클레오티드를 해독가능한 mRNA로 전사하는 것을 포함한다. 진핵세포, 바람직하게 포유동물 세포내에서 발현시키는 조절요소는 당업계에 공지되어 있다. 보통, 이들은 전사를 개시하는 조절서열 및, 선택적으로 전사의 종결 및 전사의 안정화를 보장하는 폴리-A-신호를 포함한다. 추가의 조절요소는 해독 개선제, 뿐만 아니라 전사 개선제 및/또는 자연-조합 또는 이종 프로모터 영역을 포함한다. 원핵 숙주세포내에서 발현시키는 가능한 조절요소는 E.coli내 PL, Lac, trp 또는 tac 프로모터를 포함하며, 진핵 숙주세포내에서 발현시키는 조절요소의 예로는 효모내 AOX1 또는 GAL1 프로모터, 또는 포유동물 및 기타 동물세포내 CMV-, SV40-, RSV-프로모터(라우스육종 바이러스), CMV-개선제, SV40-개선제 또는 글로빈 인트론이 있다. 전사개시에 반응할 수 있는 요소외에, 상기 조절요소는 전사종결신호, 가령 SV40-폴리-A 자리 또는 tk-폴리-A 자리, 폴리뉴클레오티드의 하류를 포함할 수도 있다. 그리고, 사용된 발현시스템에 따라, 폴리펩티드를 세포구획으로 넣을 수 있거나 또는, 배지에 그것을 분비할 수 있는 선도서열은 본 발명의 폴리뉴클레오티드의 코딩서열에 첨가될 수 있으며, 당업계에 공지되어 있으며; 또한, 하기 실시예를 참조한다. 선도서열은 해독, 개시 및 종결서열, 및 바람직하게 해독된 단백질, 또는 그의 일부를 주변세포질 공간 또는 세포외 배지에 분비할 수 있는 선도서열과 함께 적당한 단계에서 조립된다. 선택적으로, 이종서열은 발현된 재조합 생성물의 안정화 또는 간단한 정제와 같은 소망하는 특성을 부여하는 N-말단 확인 펩티드를 포함하는 융합 단백질을 코딩할 수 있으며; 상부를 참조한다. 본 명세서에서, 적당한 발현벡터는 당업계에 공지되어 있으며, 그 예로는 오카야마-Berg cDNA 발현벡터 pcDV1(Pharmacia), pCDM8, pRc/CMV, pcDNA1, pcDNA3(In-vitrogene), 또는 pSPORT1(GIBCO BRL)이 있다.

바람직하게, 발현조절서열은 진핵 숙주세포를 변형 또는 감염시킬 수 있는 벡터내 진핵 프로모터 시스템일 수 있지만, 원핵숙주를 위한 서열이 사용될 수도 있다. 벡터가 적당한 숙주에 한번 도입되면, 숙주는 뉴클레오티드 서열의 높은 수준의 발현을 위해 적당한 조건하에서 유지되며, 본 발명의 폴리펩티드의 수집 및 정제는 하기와 같으며; 실시예를 참조한다.

상기와 같이, 본 발명의 폴리펩티드는 유전자 요법 또는 B-세포 질병과 관련된 질병의 진단을 위해 세포내에서 본 발명의 폴리펩티드를 발현하기 위한 벡터의 일부로서 또는 단독으로 사용될 수 있다. 상기 폴리펩티드중 하나를 코딩하는 DNA 서열을 함유하는 폴리뉴클레오티드 또는 벡터는 주 폴리펩티드를 제조하는 세포로 도입된다. 생체외 또는 생체내 기술에 의해 세포로 치료용 유전자를 도입하는데 기초하는 유전자요법은 가장 중요한 유전자 전달용법중 하나이다. 생체외 또는 생체내 유전자 용법을 위한 적당한 벡터, 방법 또는 유전자-전달 시스템은 문헌에 개시되어 있으며, 당업계에 보통의 기술을 가진 자들에게 공지되어 있고; 예를 들어, Giordano, Nature Medicine 2(1996), 534-539; Schaper, Circ. Res. 79(1996), 911-919; Anderson, Science 256(1992), 808-813; Verma, Nature 389(1994), 239; Isner, Lancet 348(1996), 370-374; Muhlhauser, Circ. Res. 77(1995), 1077-1086; Onodera, Blood 91(1998), 30-36; Verma, Gene Ther. 5(1998), 692-699; Nabel, Ann. N.Y. Acad. Sci. 811(1997), 289-292; Verzeletti, Hum. Gene Ther. 9(1988), 2243-51; Wang, Nature Medicine 2(1996), 714-716; WO 94/29469; WO 97/00957, US 5,580,859; US 5.589,466; 또는 Schaper, Current Opinion in Biotechnology 7(1996), 635-640 및 그의 인용문헌들을 참조한다. 본 발명의 폴리뉴클레오티드 및 벡터는 세포내로 직접 도입 또는 리포좀 또는 바이러스 벡터(예를 들어, 아데노바이러스, 레트로바이러스)를 통한 도입을 위해 고안될 수 있다. 바람직하게, 상기 세포는 생식계열 세포, 배아세포 또는 난세포 또는 그로부터 유도된 세포이며, 가장 바람직하게는 상기 세포는 간세포이다. 배아 간세포에 대한 예는 Nagy, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90(1993), 8424-8428에 개시된 간세포일 수 있다.

상기에 따라, 본 발명은 본 발명의 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는, 종래의 유전공학에 사용된 벡터, 특히 플라스미드, 코스미드, 바이러스 및 박테리오파지에 관한 것이다. 바람직하게, 상기 벡터는 발현벡터 및/또는 유전자 전달 또는 표적화 벡터이다. 레트로바이러스, 백신 바이러스, 아데노-관련 바이러스, 헤르페스 바이러스 또는 소유두종 바이러스와 같은 바이러스로부터 유도된 발현벡터는 본 발명의 폴리뉴클레오티드 또는 벡터를 표적 세포군으로 전달하기 위해 사용된다. 당업자들에게 공지되어 있는 방법들은 재조합 벡터를 제조하는데 사용될 수 있으며; 예를 들어, Sambrook, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1989) N.Y. and Ausubel, Current Protocols in Molecular Biology, Green Publishing Associates and Wiley Interscience, N.Y.(1989)에 개시된 기술을 참조한다. 선택적으로, 본 발명의 폴리뉴클레오티드 및 벡터는 표적 세포에 전달하기 위해 리포좀으로 재구성될 수 있다. 본 발명의 폴리뉴클레오티드를 함유하는 벡터는 공지의 방법에 의해 숙주세포로 옮겨질 수 있으며, 이는 세포숙주의 종류에 따라 다양하다. 예를 들어, 염화칼슘 전달은 보통 원핵세포를 위해 사용되는 반면, 인산칼슘 처리 또는 전기천공법은 기타 세포숙주를 위해 사용되며; Sambrook, supra.를 참조한다. 한번 발현되면, 본 발명의 폴리펩티드는 황산암모늄 침전, 친화도 컬럼, 컬럼 크로마토그래피, 겔 전기영동 등을 포함하는 당업계의 표준 기술에 따라 정제될 수 있으며; Scopes, "Protein Purification", Springer-Verlag, N.Y.(1982)를 참조한다. 실질적으로, 약학적 용도로는 적어도 약 90 내지 95% 균질성의 순수한 폴리펩티드가 바람직하며, 98 내지 99% 또는 그 이상의 균질성이 가장 바람직하다. 부분적으로 또는 균질하게 한번 정제되면, 그후 폴리펩티드는 치료용(체외 포함) 또는 분석과정을 개발 및 수행하는데 사용될 수 있다.

추가의 구체예에서, 본 발명은 상기 폴리뉴클레오티드 또는 벡터를 함유하는 세포에 관한 것이다. 폴리펩티드의 치료용도가 포함된다면, 바람직하게, 상기 세포는 진핵세포, 가장 바람직하게 포유동물 세포이다. 생성된 폴리펩티드가 진단수단으로 사용된다면, 효모 및 덜 바람직한 원핵세포, 가령 세균세포도 제공될 수 있다.

숙주세포내에 존재하는 본 발명의 폴리뉴클레오티드 또는 벡터는 숙주세포의 게놈으로 통합되거나 또는 염색체외에서 유지될 수 있다.

원핵"이라는 용어는 본 발명의 폴리펩티드를 발현하기 위해 DNA 또는 RNA 분자로 형질전환 또는 형질감염될 수 있는 모든 세균을 포함하여 의미한다. 원핵숙주는 이. 콜라이(E. Coli), 에스. 티피뮤리움(S. typhimurium), 세라티아 마르세센스(Serratia marcescens) 및 바실루스 수브틸리스(Bacillus subtilis)와 같은 그람양성 세균 뿐만 아니라 그람음성 세균을 포함한다. "진핵"이라는 용어는 효모, 고급식물, 곤충 및 바람직하게 포유동물 세포를 포함하여 의미한다. 재조합 제조과정에 사용된 숙주에 따라, 본 발명의 폴리펩티드는 글리코실화되거나 또는 비-글리코실화된다. 본 발명의 폴리펩티드는 또한 초기 메티오닌 아미노산 잔기를 포함한다. 본 발명의 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드는 당업계에 보통의 기술을 가진 자들에게 보통 공지된 기술을 사용하여 형질전환 또는 형질감염시키는데 사용될 수 있다. N-말단 FLAG-꼬리 및/또는 C-말단 His-꼬리에 유전적으로 융합되고, 본 발명의 폴리펩티드의 코딩서열을 포함하는 플라스미드 또는 바이러스를 사용하는 것이 특히 바람직하다. 바람직하게, 상기 FLAG-꼬리의 길이는 약 4 내지 8개의 아미노산, 가장 바람직하게 8개의 아미노산이다. 포유동물 세포 및 세균내에서 조작결합된 융합유전자를 제조하고, 발현하는 방법은 당업계에 공지되어 있다(Sambrook, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1989). 상기 문헌에 기재된 유전적 구조물 및 방법은 진핵숙주 또는 원핵숙주내에서 본 발명의 폴리펩티드를 발현하기 위해 사용될 수 있다. 보통, 삽입된 폴리뉴클레오티드의 효율적인 전사를 용이하게 하는 프로모터 서열을 함유하는 발현벡터는 숙주와 연결되어 사용된다. 발현벡터는 보통 형질전환된 세포의 표현형 선택을 제공할 수 있는 특이 유전자 뿐만 아니라 복제기원, 프로모터 및 종결자를 함유한다. 그리고, 본 발명의 세포를 포함하는 유전자도입 동물, 바람직하게 포유동물은 본 발명의 폴리펩티드를 대규모로 제조하기 위해 사용된다.

추가의 구체예에서, 본 발명은 폴리펩티드를 발현하기에 적당한 조건하에서 본 발명의 세포를 배양하는 단계 및 세포 또는 배양배지로부터 폴리펩티드를 분리하는 단계로 구성된, 상기 폴리펩티드의 제조방법에 관한 것이다.

형질전환된 숙주는 최적의 세포성장을 얻기 위해 당업계에 공지된 기술에 따라 발효조에서 성장 및 배양될 수 있다. 그후, 본 발명의 폴리펩티드는 성장배지, 세포분해물 또는 세포막 프랙션으로부터 분리될 수 있다. 본 발명의 미생물적으로 발현된 폴리펩티드의 분리 및 정제는 본 발명의 폴리펩티드의 꼬리에 대한 단일클론 또는 다중클론 항체를 사용하는 것을 포함하는 제조적 크로마토그래피 분리 및 면역학적 분리와 같은 종래의 수단 또는 실시예에 기술된 바와 같은 수단에 의해 실시된다.

따라서, 본 발명은 CD19 및 CD3 항원의 에피토프의 친화도 및 특이성을 각각 가지는 결합 부위 및 선택적으로 추가의 기능도메인을 포함하는 폴리펩티드를 재조합 제조한다. 상기에서 입증되는 바와 같이, 본 발명은 치료적 및 진단적으로 사용하기 위해 상기 결합 부위를 포함하는 여러 군의 폴리펩티드를 제공한다. 본 발명의 폴리펩티드가 약물 표적화 및 영상화를 위해 상기와 같은 기타 성분에 추가로 결합될 수 있다는 것은 당업자에게 명백할 것이다. 상기 결합은 폴리펩티드의발현후에 결합 부위에서 화학적으로 진행되거나, 또는 결합생성물은 DNA 수준에서 본 발명의 폴리펩티드로 가공될 수 있다. 그후, DNA는 적당한 숙주시스템에서 발현되며, 발현된 단백질은 필요하다면 수집 및 재생된다. 상기에서와 같이, 결합 부위는 항체의 여러 영역으로부터 유도되는 것이 바람직하다. 상기 관점에서, 림프잡종 세포종 기술은 면역반응을 일으키는 소망의 물질에 항체를 분비하는 세포계를 제조할 수 있게 한다. 면역글로불린의 경쇄 및 중쇄을 코딩하는 RNA는 림프잡종 림프종의 세포질로부터 얻어질 수 있다. mRNA의 5'말단부는 본 발명의 방법에 사용되는 cDNA를 제조하기 위해 사용될 수 있다. 본 발명의 폴리펩티드를 코딩하는 DNA는 세포, 바람직하게 포유동물 세포내에서 발현될 수 있다.

숙주세포에 따라, 재생기술은 적당한 변형을 얻는데 요구된다. 필요하다면, 최적의 결합을 추구하는 포인트 치환은 여기에 개시된 종래의 카셋트 돌연변이유발 또는 기타 단백질공학 방법론을 사용하여 DNA내에서 제조될 수 있다. 본 발명의 폴리펩티드의 제조는 효소, 독소, 성장요소, 세포분화요소, 수용체, 항-대사물질, 호르몬 또는 여러 사이토킨 또는 림포킨과 같은 생리활성 단백질의 아미노산 서열(또는 대응하는 DNA 또는 RNA 서열)의 인식도에 따라 다르다. 상기 서열들은 문헌에 보고되어 있으며, 전산화 데이타 뱅크를 통해 사용할 수 있다. 예를 들어, (Gly4Ser1)1 링커에 의해 연결된 사람 동시자극 단백질 CD80의 세포외 부분 및 단쇄 Fv 단편으로 구성된 본 발명의 폴리펩티드가 제조될 수 있다. CD80 동시자극 단백질은 Ig 상과에 속한다. 이는 262개의 아미노산의 고밀도로 글리코실화된 단백질이다. 보다 상세한 설명은 Freeman, J Immunol. 143 (1989), 2714-2722에 개시되어 있다. 적당한 발현은 Kaufmann, Methods Enzymol. 185(1990), 537-566에 기술된 바와 같이 예를 들어, DHFR 부족 CHO-세포내에서 실시될 수 있다. 그후, 단백질은 Ni-NTA-컬럼을 사용하여 C-말단에 부착된 His-꼬리를 통해 정제될 수 있다(Mack, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 92(1995), 7021-7025).

추가로, 본 발명은 본 발명의 상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 또는 벡터로 구성된 조성물을 제공한다.

바람직하게, 본 발명은 본 발명의 상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 또는 벡터로 구성된 약학 조성물인 조성물에 관한 것이다.

본 발명의 약학 조성물은 약학적 허용 담체를 추가로 포함한다. 적당한 약학적 허용 담체의 예는 당업계에 주지되어 있으며, 인산염 완충 식염수, 물, 에멀젼(예컨대, 오일/물 에멀젼), 여러 종류의 습윤제, 무균용액 등을 포함한다. 상기 담체를 포함하는 조성물은 잘 알려진 종래 방법에 의해 배합될 수 있다. 상기 약학 조성물은 적당한 투여량으로 개체에 투여될 수 있다. 적당한 조성물의 투여는 정맥내, 복강내, 피하내, 근육내, 국소 또는 진피내 투여와 같은 다른 방법에 의해 실시될 수 있다. 투여방식은 의사 및 임상요인들에 의해 결정될 것이다. 의료분야에 잘 알려져 있는 바와 같이, 한 환자를 위한 투여방식은 환자의 신장, 체표면적, 연령, 투여되는 특정 화합물, 성별, 시간 및 투여경로, 일반적인 건강 및 동시에 투여되는 기타 약물들을 포함한 많은 요인들에 따라 다르다. 보통, 약학 조성물을 규칙적으로 투여하는 방식은 1일당 1㎍ 내지 10㎎의 범위내에 있어야 한다. 방식이 연속주입이라면, 이는 또한 각각 분당 체중 ㎏당 단위 1㎍ 내지 10㎎의 범위내에 있어야 한다. 그러나, 연속주입을 위한 보다 바람직한 투여량은 시간당 체중 ㎏당 단위 0.01㎍ 내지 10㎎의 범위내에 있다. 특히 바람직한 방식은 이하에 기술된다. 진행은 주기적 평가에 의해 측정될 수 있다. 투여는 다양할 것이지만, DNA의 정맥내 투여를 위한 바람직한 투여량은 DNA 분자의 약 10⁶ 내지 10¹²이다. 본 발명의 조성물은 국부적으로 또는 조직적으로 투여될 수 있다. 투여는 보통 비경구적으로, 예를 들어 정맥내로 이루어질 것이며; DNA는 또한 내부 또는 외부 표적 부위에 생분해 물질 전달에 의해 또는 카테터를 동맥내 부위에 전달함으로써 표적 부위에 직접 투여될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제조물은 무균 수성 또는 비-수성 용액, 현탁액 및 에멀젼을 포함한다. 비-수성 용매의 예로는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 식물성 오일, 가령 올리브 오일 및 주사가능한 유기 에스테르(예컨대 에틸 올레이트)가 있다. 수성 담체로는 식염수 및 완충배지을 포함하는 물, 알콜/수용액, 에멀젼 또는 현탁액이 있다. 비경구 부형제로는 염화나트륨 용액, 링거 덱스트로스, 덱스트로스 및 염화나트륨, 젖산화 링커 또는 고정 오일이 있다. 정맥내 부형제로는 유액 및 영양 보충액(예컨대, 링거 덱스트로스계) 등이 있다. 방부제 및 기타 첨가제도 또한 예를 들어, 항균제, 산화방지제, 킬레이트제 및 비활성 기체 등으로 존재할 수 있다. 그리고, 본 발명의 약학 조성물은 바람직하게 사람기원의 혈청 알부민 또는 면역글로불린과 같은 단백질성 담체를 포함한다. 그리고, 본 발명의 약학 조성물이 약학 조성물의 의도된 용도에 따라 생물학적으로 활성인 제제를 추가로 포함할 수 있다는 것도 고려한다. 상기 제제는 위장관 시스템에 작용하는 약물, 세포증식 억제에 작용하는 약물, 고요산혈증을 예방하는 약물 및/또는 당업계에 공지되어 있는 T-세포 동시자극 분자와 같은 제제이다.

본 발명의 여러 폴리뉴클레오티드 및 벡터는 단독으로 또는 표준 벡터 및/또는 유전자 운반 시스템을 사용하여 약학적 허용 담체 또는 부형제와 함께 배합하여 투여되는 것이 본 발명에 의해 고려된다. 투여 이후에, 상기 폴리뉴클레오티드 또는 벡터는 개체의 게놈 내에 안정하게 통합된다.

한편, 특정 세포 또는 조직에 대해 특이적이고, 상기 세포내에서 지속하는 바이러스 벡터가 사용될 수 있다. 적당한 약학적 담체 및 부형제는 당업계에 공지되어 있다. 본 발명에 따라 제조되는 약학 조성물은 B-세포 관련 면역결핍 및 악성 종양과 연관된 다른 종류의 질병을 예방 또는 치료 또는 지연시키기 위해 사용될 수 있다.

그리고, 유전자요법에서 본 발명의 폴리뉴클레오티드 또는 벡터를 포함하는 본 발명의 약학 조성물을 사용할 수 있다. 적당한 유전자운반 시스템에는 리포좀, 수용체-매개 전달 시스템, 네이키드 DNA, 및 바이러스 벡터(예컨대, 헤르페스 바이러스, 레트로바이러스, 아데노바이러스 및 아데노-연관 바이러스)가 포함된다. 유전자 요법을 위해 체내 특이 자리에 핵산을 운반하는 것은 Williams(Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88(1991), 2726-2729)에 개시된 바와 같은 생분해운반 시스템을 사용하여 수행될 수도 있다. 핵산을 운반하는 방법은 Verma, Gene Ther. 15(1998), 692-699에 기술된 바와 같이 입자-매개 유전자 이동을 포함한다. 도입된 폴리뉴클레오티드 및 벡터는 상기 세포내에 도입한 후에 유전자 생성물을 발현하며, 바람직하게 상기 세포의 생존기간동안 상기 상태에서 남아 있다고 이해된다. 예를 들어, 적당한 조절 서열의 조절하에 폴리뉴클레오티드를 안정하게 발현하는 세포계는 당업계에 보통의 기술을 가진 자들에게 공지된 방법에 따라 조작된다. 바이러스성 복제 기원을 포함하는 발현 벡터를 사용하는 것보다, 숙주세포는 본 발명의 폴리뉴클레오티드 및 같거나 또는 분리되어 있는 플라스미드상에서 선별가능한 마커로 형질전환될 수 있다. DNA를 도입한 후에, 조작된 세포는 풍부한 배지내에서 1-2일동안 성장되며, 선별배지에 스위칭된다. 재조합 플라스미드내에서 선별가능한 마커는 선별에 대해 내성을 제공하며, 그들의 염색체로 플라스미드를 안정하게 통합시킨 세포를 선택하게 하며, 차례로 클론될 수 있고, 세포계로 확장될 수 있는 병소를 형성하기 위해 성장한다. 상기 조작된 세포계는 또한, B-세포/T-세포 상호반응에 포함되는 화합물의 검출을 위한 선별법에 특히 유용하다.

tk^-, hgprt^- 또는 aprt^- 세포내 단순 포진 바이러스 티미딘 키나아제(Wiger, Cell 11 (1977), 223), 히폭산틴-구아닌 포스포리보실기 전이효소(Szybalska, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 48(1962), 2026), 및 아데닌 포스포리보실기 전이효소(Lowy, Cell 22 (1980), 817)를 포함하는 다수의 선별시스템이 사용되며, 이에 제한되지는 않는다. 또한, 항대사물질 내성은 메토트렉세이트에 대한 내성을 부여하는 dhfr(Wigler, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77(1980), 3567; O'Hare, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78(1981), 1527), 미코페놀산에 대한 내성을 부여하는 gpt(Mulligan, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78(1981), 2072); 아미노글리코시드 G-418에 대한 내성을 부여하는 neo(Colberre-Garapin, J. Mol. Biol. 150(1981), 1); 히그로마이신에 대한 내성을 부여하는 hygro(Santerre, Gene 30(1984), 147); 또는 퓨로마이신(pat, 퓨로마이신 N-아세틸 전이효소)에 대한 선별을 기초로 하여 사용될 수 있다. 추가의 선별가능한 유전자는 예를 들어, 트립토판 위치에서 세포가 인돌을 사용하게 하는 trpB, 히스티딘 위치에서 세포가 히스티놀을 사용하게 하는 hisD(Hartman, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85 (1988), 8047); 오르니틴 데카르복실라아제 억제물질인 2-(디플루오로메틸)-DL-오르니틴에 내성을 부여하는 ODC(오르니틴 데카르복실라아제), DFMO(McCologue, 1987, In: Current Communications in Molecular Biology, Cold Spring Harbor Laboratory ed.)이다.

다른 구체예에서, 본 발명은 본 발명의 상기 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 또는 벡터 중 하나 및 선택적으로 적당한 검출수단을 포함하는 진단용 조성물에 관한 것이다.

본 발명의 폴리펩티드는 액체상에서 사용될 수 있거나 또는 고체 상 담체에 결합될 수 있는 면역측정법에 사용되기에 적당하다. 본 발명의 폴리펩티드를 사용할 수 있는 면역측정법의 예는 직접 또는 간접 형식의 경쟁적 및 비-경쟁적 면역측정법이다. 상기 면역측정법의 예는 방사선 면역분석법(RIA), 샌드위치(면역계량측정법) 및 웨스턴 블롯(western blot) 측정법이다.

본 발명의 폴리펩티드는 많은 다른 담체들에 결합되고, 상기 폴리펩티드에 특이적으로 결합하는 세포를 분리하는데 사용될 수 있다. 공지된 담체의 예로는 유리, 폴리스티렌, 염화폴리비닐, 폴리프로필렌, 폴리에틸렌, 폴리카르보네이트, 덱스트란, 나일론, 아밀로오스, 천연 및 변형 셀룰로오스, 콜로이드 금속, 폴리아크릴아미드, 아가로스 및 자철광이 있다. 담체의 성질은 본 발명의 목적을 위해 가용성 또는 불용성일 수 있다.

많은 다른 표지 및 표지 방법은 당업자에게 공지되어 있다. 본 발명에 사용될 수 있는 표지의 예로는 효소, 방사성 동위원소, 콜로이드 금속, 형광 화합물, 화학발광 화합물 및 생물발광 화합물이 있으며; 또한 상기 논의된 구체예들을 참조한다.

본 발명은 또한, B-세포 악성종양, B-세포매개 자가면역질병 또는 B-세포 감소를 치료하기 위한 약학 조성물을 제조하기 위해 상기 본 발명의 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 및 벡터를 사용하는 것에 관한 것이다.

이특이적 항체에 의한 사람 T세포의 재표적화된 세포독성 활성에 관한 최근의 임상연구는 면역있는 호지킨 질병(33), 유방암 및 난소암(34-37) 및 악성 신경교종(38)을 치료하는 결과를 보여주었다. (Fab 또는 Fv 단편에 대해 나타난 바와 같이) bsc 항체가 저분자량으로 인해 종양에 침투하는 것을 용이하게 한다는 사실(39); 및 bsc 항체가 종래 이특이적 항체의 Fc부분에 의해 매개된 조직적 시토킨 방출에 의해 야기된 투여량 의존적 및 투여량 제한 독성을 감소시킨다는 사실(40); 및 (CD20에 대한) 온전한 단일클론 항체가 진보한 단계의 NHL에 있어서 종양 퇴화를 야기한다는 사실(41,42)이 제공되며, 본 발명의 폴리펩티드가 보다 치료향상에 공헌하는 분자라는 사실을 입증한다.

따라서, 바람직한 구체예에서 본 발명의 약학 조성물은 비-호지킨 림프종을 치료하기 위해 사용된다.

본 발명의 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 및 벡터 투여의 투여량범위는 B-세포 매개 질병의 증상이 호전되는 소망의 효과를 얻기에 충분히 넓어야 한다. 투여량은 원하지 않는 교차반응, 아나필락시성 반응 등과 같은 중요한 부작용을 일으키기에 많지 않아야 한다. 보통, 투여량은 환자의 연령, 상태, 성별 및 정도에 따라 다양할 것이며, 당업자에 의해 결정될 수 있다. 투여량은 계수표시시에 개별적인 의사에 의해 조정될 수 있다. 상기 투여범위는 본 발명의 폴리펩티드 0.01㎍ 내지 10㎎에서 설정되어야 한다고 이해되고 있다. 특히 바람직한 투여량은 실시예 7에 상술된 바와 같이, 0.1㎍ 내지 1㎎이며, 보다 바람직한 투여량은 1㎍ 내지 100㎍이고, 가장 바람직한 투여량은 3㎍ 내지 10㎍이다.

그리고, 본 발명은

(a)화합물과 세포를 상호반응시키는 조건하에서 선별되는 화합물과 함께 T-세포 활성화에 반응하여 검출할 수 있는 신호를 제공할 수 있는 성분의 존재하에서 CD19 양성 세포(바람직하게는 B-세포) 및 T-세포를 배양하는 단계; 및

(b)화합물과 세포의 상호반응으로부터 발생하는 신호의 존재 또는 부재를 검출하는 단계로 구성된,

T-세포 활성화 또는 동시자극 화합물을 확인하는 방법 또는 T-세포 활성화 및 자극을 억제하는 물질을 확인하는 방법에 관한 것이다.

본 구체예는 동시자극 분자로서 화합물의 능력을 시험하기 위해 특히 유용하다. 상기 방법에서, CD19 양성 세포/B-세포는 T-세포를 위한 일차 활성화 신호를 제공하며, 따라서 클론종류의 T-세포 수용체를 피하게 된다. 그후, 시험된 화합물이 T-세포를 실제로 활성화시키는데 필요한지를 본 발명에 따라 결정할 수 있다. 본 발명의 방법에서, CD19 양성 세포/B-세포는 같은 T-세포의 표면상에서 CD3 복합체에 결합되는 이특이적 분자를 결합하는 자극세포로서 기능한다. 배양, 검출 및 선택적으로 검사를 실시하기 위한 생물학적 방법은 당업자에게 공지되어 있다.

본 발명의 방법에서 "화합물"이라는 용어는 동일하거나 동일하지 않은 다수의 물질 또는 단일 물질을 포함한다.

상기 화합물은 식물, 동물 또는 미생물로부터 샘플, 예를 들어 세포 추출물내에 포함된다. 그러므로, 상기 화합물은 당업계에 공지되어 있지만, T-세포 활성화를 얻게할 수 있는 것으로 알려져 있지 않거나 또는 T-세포 동시자극 요소로서 사용할 수 있는 것으로 알려져 있지 않다. 다수의 화합물들은 배양 배지에 첨가되거나 또는 세포에 주입된다.

화합물을 함유하는 샘플이 본 발명의 방법에서 확인된다면, 문제의 화합물을 함유하는 화합물을 확인된 원래의 샘플로부터 분리할 수 있을 것이며, 또는 원래의 샘플을 추가로 재분할할 수 있고, 예를 들어 다수의 다른 화합물로 구성된다면, 샘플당 다른 물질의 수를 감소시키고, 원래 샘플의 재분할에 의해 방법을 반복할 수 있을 것이다. 그후, 상기 샘플 또는 화합물이 본 실시예에 기술된 바와 같이 당업계에 공지된 방법에 의해 소망의 특성을 나타내는지를 결정할 수 있다. 샘플의 복잡성에 따라, 상기 단계들은 수 시간 동안, 바람직하게 본 발명의 방법에 따라 확인된 샘플이 제한된 수 또는 1개의 물질로만 구성될 때까지 실시될 수 있다. 바람직하게, 상기 샘플은 물질 또는 유사한 화학적 및/또는 물리적 특성을 가지며, 가장 바람직하게는 상기 물질들이 동일하다. 본 발명의 방법은 종래 문헌에 기술된 기타 세포계 측정법에 따라 당업자에 의해, 또는 본 실시예에 기술된 방법을 사용 및 변형하여 쉽게 수행 및 디자인될 수 있다. 그리고, 당업자는 T-세포 활성화를 차례로 자극 또는 억제하는 전구물질로 특정 화합물을 변형시키는 인터류킨 또는 효소와 같은 추가의 화합물 및/또는 세포가 본 발명이 방법을 실시하는데 사용되는지를 쉽게 알 수 있을 것이다. 본 발명의 방법의 상기 적응은 당업자에게 잘 알려져 있으며, 과도한 실험하지 않고도 실시될 수 있다.

본 발명의 방법에 따라 사용될 수 있는 화합물은 펩티드, 단백질, 핵산, 항체, 작은 유기화합물, 리간드, 펩티도미메틱(peptidomimetic), PNA 등을 포함한다. 상기 화합물은 또한 공지된 T-세포 할성화 물질 또는 억제물질의 기능적 유도체 또는 유사물일 수 있다. 화학적 유도체 및 유사물을 제조하는 방법은 당업계에 보통의 기술을 가진 자들에게 잘 알려져 있으며, 예를 들어, Beilstein, Handbook of Organic Chemistry, Springer edition New York Inc., 175 Fifth Avenue, New York, N.Y. 10010 U.S.A 및 Organic Synthesis, Wiley, New York, USA에 기술되어 있다. 그리고, 상기 유도체 및 유사체는 당업계에 공지되어 있는 방법에 따라, 또는 예를 들어 본 실시예에 기술된 바와 같이 그들의 효과에 대해 시험될 수 있다. 그리고, T-세포 활성화의 적당한 활성화 인자 또는 억제물질의 펩티도미메틱 및/또는 컴퓨터 보조디자인은 하기 방법에 따라 사용될 수 있다. 적당한 컴퓨터 프로그램은 상보적 구조모티프를 위한 컴퓨터 보조 연구에 의해 본 발명의 추정의 억제물질 및 항원의 상호반응자리를 확인하기 위해 사용될 수 있다(Fassina, Immunomethods 5(1994), 114-120). 단백질 및 펩티드의 컴퓨터 보조 디자인을 위한 적당한 컴퓨터 시스템은 종래문헌, 예를 들어 Berry, Biochem. Soc. Trans. 22(1994), 1033-1036; Wodak, Ann. N.Y. Acad. Sci. 501(1987), 1-13; Pabo, Biochemistry 25(1986), 5987-5991에 기술되어 있다. 상기 컴퓨터 분석으로부터 얻은 결과는 공지된 T-세포 활성화 인자 또는 억제 인자를 최적화하기 위해 본 발명의 방법과 조합하여 사용될 수 있다. 또한, 적당한 펩티도미메틱은 본 명세서 및 실시예에 기술된 방법에 따라 결과 화합물을 시험하고, 연속적인 화학적 변형을 통한 펩티도미메틱 조합 라이브러리의 합성에 의해 확인될 수 있다. 펩티도미메틱 조합 라이브러리를 발생시키고 사용하는 방법은 예를 들어, Ostresh, Methods in Enzymology 267 (1996), 220-234 및 Dorner, Bioorg. Med. Chem. 4 (1996), 709-715에 기술되어 있다. 그리고, B-세포/T-세포 상호반응의 억제 인자 또는 활성화 인자의 삼차원 및/또는 결정학적 구조는 본 발명의 방법에서 시험되는 T-세포 활성화의 펩티도미메틱 억제 인자 또는 활성화 인자를 디자인하는데 사용될 수 있다(Rose, Biochemistry 35(1996), 12933-12944; Rutenber, Bioorg. Med. Chem. 4(1996), 1545-1558).

요컨대, 본 발명은 B-세포/T-세포 매개 면역반응을 조절할 수 있는 화합물을 확인하기 위한 방법을 제공한다.

B-세포/T-세포 매개 반응을 활성화시키는 것으로 밝혀진 화합물은 암 및 관련 질병을 치료하는데 사용될 수 있다. 또한, 바이러스성 질병을 특이적으로 억제함으로써 바이러스 감염 또는 바이러스 확산을 막을 수 있다. T-세포 활성화 또는 자극의 억제물질로서 확인된 화합물은 이식편 거부를 피하기 위해 기관 이식에 사용되며; 또한 상기를 참조한다.

본 발명의 방법에 따라 확인되거나 또는 얻어진 화합물은 진단용 및 특히 치료용도로 매우 유용한 것으로 기대된다. 따라서, 추가의 구체예에서 본 발명은 본 발명의 방법중 단계(b)에서 확인된 화합물을 약학적 허용 형태로 배합하는 단계를 포함하는 약학 조성물의 제조방법에 관한 것이다. 그리고, 상기 성분은 펩티도미메틱에 의해 변형될 수 있는 것으로 간주된다. 펩티도미메틱 조합 라이브러리를 발생시키고 사용하는 방법은 종래 문헌, 예를 들어, Ostresh, Methods in Enzymology 267(1996), 210-234, Dorner, Bioorg. Med. Chem. 4 (1996), 709-715, Beeley, Trends Biotechnol. 12(1994), 213-216 또는 al-Obeidi, Mol. Biotech. 9(1998), 205-223에 기술되어 있다.

본 발명의 방법에 따라 확인된 치료용으로 유용한 화합물은 화합물의 효능이 원하는 곳에 또는 근처에 (고체 또는 반-고체의 생물학적으로 적합하고, 재흡수가능한 기질의 형태로 있는 화합물에 의해) 수술 또는 이식에 의해 또는 경구로, 정맥내로, 비경구로, 피하로, 근육내로 특정 화합물을 적당한 방법에 의해 환자에게 투여될 수 있다. 치료 투여량은 당업자에 의해 적당하게 결정되며, 상기를 참조한다.

추가로, 본 발명은 B-세포 악성종양, B-세포 매개 자가면역질병 또는 B-세포의 감소를 치료하는 방법 및/또는 본 발명의 폴리펩티드, 폴리뉴클레오티드 또는 벡터를 상기 악성종양, 질병 및/또는 병리상태에 감염된 포유동물에 도입시키는 단계를 포함하는 B-세포 질병에 의해 야기된 병리상태를 지연시키는 방법을 제공한다. 그리고, 상기 포유동물은 사람인 것이 바람직하다.

상기 및 기타 구체예는 본 발명의 상술 및 실시예에 의해 개시 및 포함된다. 본 발명에 따라 사용되는 항체, 방법, 용도 및 화합물 중 어느 하나와 관련된 문헌은 전자장치를 사용한 공공도서관 및 데이터베이스로부터 검색될 수 있다. 예를 들어, 공공 데이터베이스 "메들린(Medline)"은 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/PubMed/medline.html과 같은 인터넷상에서 사용가능하다. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/, http://www.infobiogen.fr/, http://www.fmi.ch/biology/research_tools.html, http://www.tigr.org/와 같은 추가의 데이터베이스 및 웹 사이트 주소는 당업자에게 주지되어 있으며, 또한 http://www.lycos.com을 사용하여 얻을 수도 있다. 후향성 연구 및 현재 인식에 사용할 수 있는 특허정보의 관련 소스의 조사 및 생물공학에 있어서의 특허정보의 개관은 Berks, TIBTECH 12 (1994), 352-364에 개시되어 있다.

SEQUENCE LISTING <110> DOERKEN, Bernd RIETHMUELLER, Bernd <120> Novel CD19xCD3 specific polypeptides and uses thereof <130> C1514PCT <140> PCT/EP99/02693 <141> 1999-04-21 <160> 10 <170> PatentIn Ver. 2.1 <210> 1 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 1 gaagcacgcg tagatatckt gmtsacccaa wctcca 36 <210> 2 <211> 30 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 2 gaagatggat ccagcggccg cagcatcagc 30 <210> 3 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 3 cagccggcca tggcgcaggt scagctgcag sag 33 <210> 4 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 4 accaggggcc agtggataga caagcttggg tgtcgtttt 39 <210> 5 <211> 36 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 5 aggtgtacac tccatatcca gctgacccag tctcca 36 <210> 6 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 6 ggagccgccg ccgccagaac caccaccttt gatctcgagc ttggtccc 48 <210> 7 <211> 48 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 7 ggcggcggcg gctccggtgg tggtggttct caggtactgc agagtcgg 48 <210> 8 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Description of Artificial Sequence: Artificial sequence <400> 8 aatccggagg agacggtgac cgtggtccct tggccccag 39 <210> 9 <211> 1611 <212> DNA <213> Homo sapiens <220> <221> CDS <222> (11)..(1603) <400> 9 gaattccacc atg gga tgg agc tgt atc atc ctc ttc ttg gta gca aca 49 Met Gly Trp Ser Cys Ile Ile Leu Phe Leu Val Ala Thr 1 5 10 gct aca ggt gtc cac tcc gac tac aaa gat gat gac gat aag gat atc 97 Ala Thr Gly Val His Ser Asp Tyr Lys Asp Asp Asp Asp Lys Asp Ile 15 20 25 cag ctg acc cag tct cca gct tct ttg gct 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Ser Gly Ser 85 90 95 Gly Ser Gly Thr Asp Phe Thr Leu Asn Ile His Pro Val Glu Lys Val 100 105 110 Asp Ala Ala Thr Tyr His Cys Gln Gln Ser Thr Glu Asp Pro Trp Thr 115 120 125 Phe Gly Gly Gly Thr Lys Leu Glu Ile Lys Gly Gly Gly Gly Ser Gly 130 135 140 Gly Gly Gly Ser Gly Gly Gly Gly Ser Gln Val Gln Leu Gln Gln Ser 145 150 155 160 Gly Ala Glu Leu Val Arg Pro Gly Ser Ser Val Lys Ile Ser Cys Lys 165 170 175 Ala Ser Gly Tyr Ala Phe Ser Ser Tyr Trp Met Asn Trp Val Lys Gln 180 185 190 Arg Pro Gly Gln Gly Leu Glu Trp Ile Gly Gln Ile Trp Pro Gly Asp 195 200 205 Gly Asp Thr Asn Tyr Asn Gly Lys Phe Lys Gly Lys Ala Thr Leu Thr 210 215 220 Ala Asp Glu Ser Ser Ser Thr Ala Tyr Met Gln Leu Ser Ser Leu Ala 225 230 235 240 Ser Glu Asp Ser Ala Val Tyr Phe Cys Ala Arg Arg Glu Thr Thr Thr 245 250 255 Val Gly Arg Tyr Tyr Tyr Ala Met Asp Tyr Trp Gly Gln Gly Thr Thr 260 265 270 Val Thr Val Ser Ser Gly Gly Gly Gly Ser Asp Ile Lys Leu Gln Gln 275 280 285 Ser Gly Ala Glu Leu Ala Arg Pro Gly Ala Ser Val Lys Met Ser Cys 290 295 300 Lys Thr Ser Gly Tyr Thr Phe Thr Arg Tyr Thr Met His Trp Val Lys 305 310 315 320 Gln Arg Pro Gly Gln Gly Leu Glu Trp Ile Gly Tyr Ile Asn Pro Ser 325 330 335 Arg Gly Tyr Thr Asn Tyr Asn Gln Lys Phe Lys Asp Lys Ala Thr Leu 340 345 350 Thr Thr Asp Lys Ser Ser Ser Thr Ala Tyr Met Gln Leu Ser Ser Leu 355 360 365 Thr Ser Glu Asp Ser Ala Val Tyr Tyr Cys Ala Arg Tyr Tyr Asp Asp 370 375 380 His Tyr Cys Leu Asp Tyr Trp Gly Gln Gly Thr Thr Leu Thr Val Ser 385 390 395 400 Ser Val Glu Gly Gly Ser Gly Gly Ser Gly Gly Ser Gly Gly Ser Gly 405 410 415 Gly Val Asp Asp Ile Gln Leu Thr Gln Ser Pro Ala Ile Met Ser Ala 420 425 430 Ser Pro Gly Glu Lys Val Thr Met Thr Cys Arg Ala Ser Ser Ser Val 435 440 445 Ser Tyr Met Asn Trp Tyr Gln Gln Lys Ser Gly Thr Ser Pro Lys Arg 450 455 460 Trp Ile Tyr Asp Thr Ser Lys Val Ala Ser Gly Val Pro Tyr Arg Phe 465 470 475 480 Ser Gly Ser Gly Ser Gly Thr Ser Tyr Ser Leu Thr Ile Ser Ser Met 485 490 495 Glu Ala Glu Asp Ala Ala Thr Tyr Tyr Cys Gln Gln Trp Ser Ser Asn 500 505 510 Pro Leu Thr Phe Gly Ala Gly Thr Lys Leu Glu Leu Lys His His His 515 520 525 His His His 530

Claims

(a) CD19 항원을 특이적으로 인식하는 면역글로불린 사슬 또는 항체의 결합 부위를 포함하는 제1 도메인(domain), 및

(b) 인간 CD3 항원을 특이적으로 인식하는 면역글로불린 사슬 또는 항체의 결합 부위를 포함하는 제2 도메인을 포함하는 단쇄(單鎖) 다기능 폴리펩티드(single-chain multi-functional polypeptide)로서,

상기 제1 도메인 및 상기 제2 도메인은 V_LCD19-V_HCD19-V_HCD3-V_LCD3의 순서로 배열되어 있는 것인 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 1 항에 있어서,

상기 제1 도메인 및 상기 제2 도메인은 폴리펩티드 링커(polypeptide linker)에 의해 연결되어 있는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
삭제
제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,

상기 항체는 단일클론 항체, 합성 항체 또는 인간화(humanized) 항체인 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,

상기 제1 도메인 또는 상기 제2 도메인은 항체의 가변 영역의 단쇄 단편인 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
삭제
제 2 항에 있어서,

상기 폴리펩티드 링커는 글리신, 알라닌, 세린 및 이들의 조합으로 이루어진 군으로부터 선택되는 복수의 아미노산 잔기를 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 2 항에 있어서,

상기 폴리펩티드 링커는 글리신, 알라닌, 세린 및 이들의 조합으로 이루어진 군으로부터 선택되는 복수의 아미노산 잔기를 포함하는 아미노산 서열의 복수의 연속 복제물을 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 2 항에 있어서,

상기 폴리펩티드 링커는 1개 내지 5개의 아미노산 잔기를 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 2 항에 있어서,

상기 폴리펩티드 링커는 아미노산 서열 Gly Gly Gly Gly Ser을 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,

상기 제1 도메인은 도 8의 뉴클레오티드 82~414(V_L) 및 뉴클레오티드 460~ 831(V_H)로 표시되는 DNA 서열에 의해 코딩된 아미노산 서열을 포함하는 V_H 및 V_L 영역의 적어도 하나의 CDR을 포함하거나; 또는

상기 제2 도메인은 도 8의 뉴클레오티드 847~1203(V_H) 및 뉴클레오티드 1258~1575(V_L)로 표시되는 DNA 서열에 의해 코딩된 아미노산 서열을 포함하는 V_H 및 V_L 영역의 적어도 하나의 CDR을 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,

(a) 상기 제1 도메인의 결합 부위는 약 10^-7M 이상의 친화도(affinity)를 가지거나; 또는

(b) 상기 제2 도메인의 결합 부위는 약 10^-7M 미만의 친화도를 가지는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,

CD19 항원과 CD3 항원을 특이적으로 인식하는 단쇄 항체인 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 1 항 또는 제 2 항에 있어서,

1개 이상의 추가의 도메인을 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 14 항에 있어서,

상기 1개 이상의 추가의 도메인은 공유 결합 또는 비공유 결합에 의해 연결되는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
제 14 항에 있어서,

상기 1개 이상의 추가의 도메인은 이온을 봉쇄(sequestering)할 수 있거나 고체 지지체 또는 예정된 결정기(determinant)에 선택적으로 결합될 수 있는, 생물학적 활성에 적당한 배좌(conformation)를 가지는 효과 인자(effector) 분자를 포함하는 것을 특징으로 하는 단쇄 다기능 폴리펩티드.
발현시에 제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드를 코딩하는 폴리뉴클레오티드.
제 17 항의 폴리뉴클레오티드를 포함하는 벡터.
제 17 항의 폴리뉴클레오티드 또는 제 18 항의 벡터에 의해 형질전환된 세포.
제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드의 제조 방법으로서,

제 19 항의 세포를 배양하는 단계 및 배양물로부터 단쇄 다기능 폴리펩티드를 단리(單離)하는 단계를 포함하는 것인 방법.
제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드, 제 17 항의 폴리뉴클레오티드 또는 제 18 항의 벡터를 포함하는 조성물.
제 21 항에 있어서,

상기 조성물은 B-세포 악성 종양, B-세포 매개 자가면역 질환 또는 B-세포 결핍을 치료하거나 B-세포 장해에 의해 야기되는 병리학적 증상을 지연시키기 위한 약학 조성물로서, 약학적 허용 담체를 추가로 포함할 수 있는 약학 조성물인 것을 특징으로 하는 조성물.
제 21 항에 있어서,

효소, 방사성 동위원소, 콜로이드 금속, 형광 화합물, 화학발광 화합물 및 생물발광 화합물을 포함하는 군으로부터 선택되는 검출 수단을 추가로 포함할 수 있는 진단용 조성물인 것을 특징으로 하는 조성물.
B-세포 악성 종양, B-세포 매개 자가면역 질환 또는 B-세포 결핍을 치료하거나 B-세포 장해에 의해 야기되는 병리학적 증상을 지연시키기 위한 약학 조성물로서,

제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드, 제 17 항의 폴리뉴클레오티드 또는 제 18 항의 벡터, 및 약학적 허용 담체 또는 부형제를 포함하는 것인 약학 조성물.
제 24 항에 있어서,

상기 B-세포 악성 종양은 비(非)-호지킨 림프종인 것을 특징으로 하는 약학 조성물.
유전자 치료용 약학 조성물로서,

제 17 항의 폴리뉴클레오티드 또는 제 18 항의 벡터, 및 약학적 허용 담체 또는 부형제를 포함하는 것인 약학 조성물.
T-세포의 활성화 또는 자극의 활성화 인자(activator) 또는 억제 인자(inhibitor)를 동정(同定)하는 방법으로서,

(a) 제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드의 존재하에서 또는 제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드와 T-세포 활성화에 대한 응답으로 검출가능한 신호를 제공할 수 있는 성분의 존재하에서, T-세포 활성화를 허용하는 조건하에 스크리닝 대상 화합물과 함께 T-세포, CD19 양성 세포 및 B-세포를 배양하는 단계; 및

(b) 상기 화합물과 상기 세포들의 상호작용으로부터 발생된 신호의 존재 또는 부재를 검출하는 단계를 포함하는 것인 방법.
삭제
삭제
포유동물(인간을 제외함)의 B-세포 악성 종양, B-세포 매게 자가면역 질환 또는 B-세포 결핍을 치료하는 방법으로서,

상기 B-세포 악성 종양, B-세포 매게 자가면역 질환 또는 B-세포 결핍이 있는 포유동물(인간을 제외함)의 체내에 제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드, 제 17 항의 폴리뉴클레오티드 또는 제 18 항의 벡터를 도입하는 단계를 포함하는 것인 방법.
포유동물(인간을 제외함)의 B-세포 장해에 의해 야기되는 병리학적 증상을 지연시키는 방법으로서,

상기 B-세포 장해에 의해 야기되는 병리학적 증상이 있는 포유동물(인간을 제외함)의 체내에 제 1 항 또는 제 2 항의 단쇄 다기능 폴리펩티드, 제 17 항의 폴리뉴클레오티드 또는 제 18 항의 벡터를 도입하는 단계를 포함하는 것인 방법.
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