JPH04289456A - 免疫化学的検査装置 - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、免疫学的検査装置、免
疫化学的標識およびこれを含有する水性懸濁液、ならび
に該免疫化学的標識の製造方法に関する。
疫化学的標識およびこれを含有する水性懸濁液、ならび
に該免疫化学的標識の製造方法に関する。
【0002】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】免疫
化学の使用によって生物学的液体試料中の分析物の存在
を検出する種々の方法が開示されている。いわゆる“サ
ンドイッチ”法では、例えば、抗原のような標的分析物
を、標識化抗体(labeled antibody)
と固体支持体上に固定化された抗体との間に“挟む”。 この検査法は、結合された抗原−標識化抗体複合体の存
在およびその量を観察することによって行われる。競合
免疫学的検査法では、固体表面に結合した抗体を、未知
の量の抗原分析物を含有する試料および同じタイプの標
識化抗原(labeled antigen)と接触
させる。次いで、固体表面上に結合した標識化抗原の量
を測定することによって、試料中の抗原分析物の量を間
接的に測定する。
化学の使用によって生物学的液体試料中の分析物の存在
を検出する種々の方法が開示されている。いわゆる“サ
ンドイッチ”法では、例えば、抗原のような標的分析物
を、標識化抗体(labeled antibody)
と固体支持体上に固定化された抗体との間に“挟む”。 この検査法は、結合された抗原−標識化抗体複合体の存
在およびその量を観察することによって行われる。競合
免疫学的検査法では、固体表面に結合した抗体を、未知
の量の抗原分析物を含有する試料および同じタイプの標
識化抗原(labeled antigen)と接触
させる。次いで、固体表面上に結合した標識化抗原の量
を測定することによって、試料中の抗原分析物の量を間
接的に測定する。
【0003】これらの方法および以下に説明する他の方
法は、抗体および抗原の両方を検出することができるの
で、該方法は、一般的に、免疫化学的リガンド−レセプ
ター検査法または単に免疫学的検査法と呼ばれている。
法は、抗体および抗原の両方を検出することができるの
で、該方法は、一般的に、免疫化学的リガンド−レセプ
ター検査法または単に免疫学的検査法と呼ばれている。
【0004】サンドイッチまたは競合のいずれかのタイ
プの固相免疫学的検査装置によって、血液または尿のよ
うな生物学的液体試料中の分析物の高感度の検出が行わ
れる。固相免疫学的検査装置は、リガンド−レセプター
対のうちの1つの部材、通常、抗体、抗原またはハプテ
ンを結合している固体支持体と一体化されている。初期
の一般的な固体支持体の形態は、放射免疫学的検査法お
よび酵素免疫学的検査法の分野から周知であるポリスチ
レン製のプレート、管またはビーズであった。さらに近
年は、ナイロン、ニトロセルロース、酢酸セルロース、
ガラス繊維および他の多孔性ポリマーのような多くの多
孔性物質が固体支持体として用いられている。
プの固相免疫学的検査装置によって、血液または尿のよ
うな生物学的液体試料中の分析物の高感度の検出が行わ
れる。固相免疫学的検査装置は、リガンド−レセプター
対のうちの1つの部材、通常、抗体、抗原またはハプテ
ンを結合している固体支持体と一体化されている。初期
の一般的な固体支持体の形態は、放射免疫学的検査法お
よび酵素免疫学的検査法の分野から周知であるポリスチ
レン製のプレート、管またはビーズであった。さらに近
年は、ナイロン、ニトロセルロース、酢酸セルロース、
ガラス繊維および他の多孔性ポリマーのような多くの多
孔性物質が固体支持体として用いられている。
【0005】抗原、ハプテンまたは抗体のような免疫化
学的成分の固相担体として多孔性物質を用いる多くの自
蔵式免疫学的検査装置が開示されている。これらの装置
は通常、ディップスティック(dipstick)、フ
ロースルー(flow−through)またはマイグ
レートリィ(migratory)の形態である。
学的成分の固相担体として多孔性物質を用いる多くの自
蔵式免疫学的検査装置が開示されている。これらの装置
は通常、ディップスティック(dipstick)、フ
ロースルー(flow−through)またはマイグ
レートリィ(migratory)の形態である。
【0006】家庭用妊娠および排卵検出装置によって代
表されるディップスティック検査法のより一般的な形態
では、抗体のような免疫化学的成分を固相に結合させる
。該検査装置を、未知の抗原分析物を含有すると推測さ
れる試料中にインキュベーションのために“浸漬”する
。次いで、インキュベーションと同時またはその後に酵
素−標識化抗体を添加する。次に、装置を洗浄し、次い
で、酵素に対する基質を含有する第2溶液中に差し込む
。酵素−標識は、存在する場合は、基質と相互作用し合
い、その結果、着色された生成物の形成が生じ、該生成
物は、固相上に沈殿物として堆積するかまたは基質溶液
中で明白な変色を生じる。バックスター(Baxter
)らの欧州特許出願公開EP−A0125118号には
、このようなサンドイッチ型ディップスティック免疫学
的検査法が開示されている。カリ(Kali)らの欧州
特許出願公開EP−A0282192号には、競合型検
査法において使用するためのディップスティック装置が
開示されている。
表されるディップスティック検査法のより一般的な形態
では、抗体のような免疫化学的成分を固相に結合させる
。該検査装置を、未知の抗原分析物を含有すると推測さ
れる試料中にインキュベーションのために“浸漬”する
。次いで、インキュベーションと同時またはその後に酵
素−標識化抗体を添加する。次に、装置を洗浄し、次い
で、酵素に対する基質を含有する第2溶液中に差し込む
。酵素−標識は、存在する場合は、基質と相互作用し合
い、その結果、着色された生成物の形成が生じ、該生成
物は、固相上に沈殿物として堆積するかまたは基質溶液
中で明白な変色を生じる。バックスター(Baxter
)らの欧州特許出願公開EP−A0125118号には
、このようなサンドイッチ型ディップスティック免疫学
的検査法が開示されている。カリ(Kali)らの欧州
特許出願公開EP−A0282192号には、競合型検
査法において使用するためのディップスティック装置が
開示されている。
【0007】フロースルー型免疫学的検査装置は、ディ
ップスティック検査法に関連する広範なインキュベーシ
ョンおよび煩わしい洗浄工程の必要性を取り除くために
設計された。バルカーズ(Valkirs)らの米国特
許第4,632,901号には、多孔性膜またはフィル
ターに結合する抗体(標的抗原分析物に対して特異的)
からなり、これに液体試料を加える装置が開示されてい
る。該液体が膜を通って流れると、標的分析物が抗体と
結合する。 試料の添加に次いで、標識化抗体を添加する。標識化抗
体の肉眼による検出によって、試料中の標的抗原分析物
の存在がわかる。
ップスティック検査法に関連する広範なインキュベーシ
ョンおよび煩わしい洗浄工程の必要性を取り除くために
設計された。バルカーズ(Valkirs)らの米国特
許第4,632,901号には、多孔性膜またはフィル
ターに結合する抗体(標的抗原分析物に対して特異的)
からなり、これに液体試料を加える装置が開示されてい
る。該液体が膜を通って流れると、標的分析物が抗体と
結合する。 試料の添加に次いで、標識化抗体を添加する。標識化抗
体の肉眼による検出によって、試料中の標的抗原分析物
の存在がわかる。
【0008】コロム(Korom)らの欧州特許出願公
開EP−A0299359号には、標識化抗体が試薬運
搬系として作用する膜と一体化したフロースルー装置に
おける変形が開示されている。
開EP−A0299359号には、標識化抗体が試薬運
搬系として作用する膜と一体化したフロースルー装置に
おける変形が開示されている。
【0009】ディップスティックおよびフロースルー型
免疫学的検査装置について必要とされる多数の添加およ
び洗浄工程によって、最低限度に訓練された人員および
家庭ユーザーが間違った検査結果を得る可能性が増大さ
れる。
免疫学的検査装置について必要とされる多数の添加およ
び洗浄工程によって、最低限度に訓練された人員および
家庭ユーザーが間違った検査結果を得る可能性が増大さ
れる。
【0010】マイグレーション型検査法では、検査を行
うのに必要とされる試薬を膜にしみ込ませる。分析物検
出ゾーンが設置されており、該ゾーンにおいて標識化分
析物が結合され、検査表示が判断される。例えば、トム
(Tom)らの米国特許第4,366,241号および
ズク(Zuk)の欧州特許出願公開EP−A01435
74号参照。
うのに必要とされる試薬を膜にしみ込ませる。分析物検
出ゾーンが設置されており、該ゾーンにおいて標識化分
析物が結合され、検査表示が判断される。例えば、トム
(Tom)らの米国特許第4,366,241号および
ズク(Zuk)の欧州特許出願公開EP−A01435
74号参照。
【0011】しかし、検出ゾーンへの標識化分析物の通
過を遮断する、試料中における望ましくない固体成分の
存在または形成によってしばしばマイグレーション型検
査法の感度が減衰する。マイグレーション検査装置が必
要以上に多い液体試料で溢れる場合も、検査感度は衰え
る。
過を遮断する、試料中における望ましくない固体成分の
存在または形成によってしばしばマイグレーション型検
査法の感度が減衰する。マイグレーション検査装置が必
要以上に多い液体試料で溢れる場合も、検査感度は衰え
る。
【0012】通常、マイグレーション検査装置は、該装
置の内部で、着色した標識に付着させた試薬を一体化し
ており、したがって他の物質を添加せずに検査結果を肉
眼で検出することができる。例えば、バーンスタイン(
Bernstein)の米国特許第4,770,853
号、メイ(May)らの国際出願公開WO88/085
34号、およびチン(Ching)らの欧州特許出願公
開EP−A0299428号参照。
置の内部で、着色した標識に付着させた試薬を一体化し
ており、したがって他の物質を添加せずに検査結果を肉
眼で検出することができる。例えば、バーンスタイン(
Bernstein)の米国特許第4,770,853
号、メイ(May)らの国際出願公開WO88/085
34号、およびチン(Ching)らの欧州特許出願公
開EP−A0299428号参照。
【0013】このような標識としては、米国特許第4,
313,734号においてロイバーリング(Leuve
ring)よって開示されたような金ゾル粒子、グリブ
ナウ(Gribnau)らの米国特許第4,373,3
29号およびメイ(May)らの国際出願公開WO88
/08534号によって開示されたような染料ゾル粒子
、上記メイの国際出願公開WO88/08534号、ス
ナイダー(Snyder)の欧州特許出願公開EP−A
0280559号および0281327号によって開示
された着色されたようなラテックス、およびキャンベル
(Campbell)らの米国特許第4,703,01
7号によるリポソーム中に被包された染料が挙げられる
。これらの着色された標識は、一般に、適切である固定
化方法によって限定されている。さらに、これらは、比
較的多量のリガンド分子を必要とし、高価な試薬を含む
ことができ、したがって費用が増す。
313,734号においてロイバーリング(Leuve
ring)よって開示されたような金ゾル粒子、グリブ
ナウ(Gribnau)らの米国特許第4,373,3
29号およびメイ(May)らの国際出願公開WO88
/08534号によって開示されたような染料ゾル粒子
、上記メイの国際出願公開WO88/08534号、ス
ナイダー(Snyder)の欧州特許出願公開EP−A
0280559号および0281327号によって開示
された着色されたようなラテックス、およびキャンベル
(Campbell)らの米国特許第4,703,01
7号によるリポソーム中に被包された染料が挙げられる
。これらの着色された標識は、一般に、適切である固定
化方法によって限定されている。さらに、これらは、比
較的多量のリガンド分子を必要とし、高価な試薬を含む
ことができ、したがって費用が増す。
【0014】
【課題を解決するための手段】本発明は、免疫化学的リ
ガンド−レセプター反応、および特別に選択し、処理し
、配置した濾過材(filter material
s)の使用による生物学的液体試料中における分析物の
存在の検出装置を提供するものである。
ガンド−レセプター反応、および特別に選択し、処理し
、配置した濾過材(filter material
s)の使用による生物学的液体試料中における分析物の
存在の検出装置を提供するものである。
【0015】本発明の特徴は、以下の説明および添付の
図面から明らかである。
図面から明らかである。
【0016】図1は、代表的な一方向性検査装置の断面
図であり;図2は、他の一方向性検査装置の断面図であ
り;図3は、代表的な二方向性検査装置の断面図であり
;図4は、単一の開口を有するプラスチック製容器中に
入れた図2で示すような検査装置(部分的に隠れ線(p
hantom lines)で示す)の斜視図であり
;図5は、多方向性検査装置の平面図であり;図6は、
2つの開口を有するプラスチック製容器に入れた図2で
示すような検査装置(部分的に隠れ線で示す)の斜視図
である。
図であり;図2は、他の一方向性検査装置の断面図であ
り;図3は、代表的な二方向性検査装置の断面図であり
;図4は、単一の開口を有するプラスチック製容器中に
入れた図2で示すような検査装置(部分的に隠れ線(p
hantom lines)で示す)の斜視図であり
;図5は、多方向性検査装置の平面図であり;図6は、
2つの開口を有するプラスチック製容器に入れた図2で
示すような検査装置(部分的に隠れ線で示す)の斜視図
である。
【0017】図1に関し、貯蔵パッド10、フィルター
素子12、および検査指標域18において規定された固
定化物質を含む吸上膜16が基板20上に配置されてい
る。貯蔵パッド10は、検査される液体試料を受け入れ
かつ収容するのに充分な多孔度および容量を有している
。フィルター素子12は、貯蔵パッド10の容量に対し
て相対的に小さい貯蔵パッド10の表面に隣接し、かつ
接して横切り、該貯蔵パッド10からフィルター素子1
2へエマージする(emerging)液体試料の通過
を計量することができる。
素子12、および検査指標域18において規定された固
定化物質を含む吸上膜16が基板20上に配置されてい
る。貯蔵パッド10は、検査される液体試料を受け入れ
かつ収容するのに充分な多孔度および容量を有している
。フィルター素子12は、貯蔵パッド10の容量に対し
て相対的に小さい貯蔵パッド10の表面に隣接し、かつ
接して横切り、該貯蔵パッド10からフィルター素子1
2へエマージする(emerging)液体試料の通過
を計量することができる。
【0018】吸上膜16の規定された帯域18に、フィ
ルター素子12を通過する試料中に含まれる如何なる特
異的リガンドレセプター複合体をも結合するのに使用可
能である固定化物質が配置されている。
ルター素子12を通過する試料中に含まれる如何なる特
異的リガンドレセプター複合体をも結合するのに使用可
能である固定化物質が配置されている。
【0019】この具体例において、特異的リガンドレセ
プター複合体を生成するのに使用可能な試薬を試料に添
加し、ここで反応して複合体が形成され(適当な分析物
を含有していると思われる)、次いで、該試料を貯蔵パ
ッド10と接触させる。該試料は、フィルター素子12
を介して移動し、ここで試料中に存在し得る不必要な成
分がトラップされ、吸上膜16内に移動する。標識化分
析物は、存在する場合、検査指標域18と結合して、肉
眼で検出可能な信号を生じる。
プター複合体を生成するのに使用可能な試薬を試料に添
加し、ここで反応して複合体が形成され(適当な分析物
を含有していると思われる)、次いで、該試料を貯蔵パ
ッド10と接触させる。該試料は、フィルター素子12
を介して移動し、ここで試料中に存在し得る不必要な成
分がトラップされ、吸上膜16内に移動する。標識化分
析物は、存在する場合、検査指標域18と結合して、肉
眼で検出可能な信号を生じる。
【0020】図2に示す具体例では、貯蔵パッド10、
フィルター素子12および吸上膜16に加えて、第2フ
ィルター素子14が基板20の上に配置されている。貯
蔵パッド10は、検査する液体試料を受け入れ、かつ収
容するのに充分な多孔度および容量を有している。第1
フィルター素子12は、貯蔵パッド10の容量に対して
相対的に小さい貯蔵パッドの表面に隣接し、かつ接して
横切り、該貯蔵パッド10から第1フィルター素子12
へエマージする液体試料の通過が計量される。この具体
例では、特異的リガンドレセプター複合体を生成する試
薬が第1フィルター素子12の全体にわたって均等に含
浸されている。液体試料が貯蔵パッド10からエマージ
すると、第1フィルター素子12に含浸されている試薬
と接触し、ここで反応して特異的リガンドレセプター複
合体または複合体(複数)を形成する(試料は、適当な
分析物および分析物(複数)を含有していると思われる
)。 試薬運搬系として第1フィルター素子を使用することに
よって、分離試薬添加工程の必要性が取り除かれる。
フィルター素子12および吸上膜16に加えて、第2フ
ィルター素子14が基板20の上に配置されている。貯
蔵パッド10は、検査する液体試料を受け入れ、かつ収
容するのに充分な多孔度および容量を有している。第1
フィルター素子12は、貯蔵パッド10の容量に対して
相対的に小さい貯蔵パッドの表面に隣接し、かつ接して
横切り、該貯蔵パッド10から第1フィルター素子12
へエマージする液体試料の通過が計量される。この具体
例では、特異的リガンドレセプター複合体を生成する試
薬が第1フィルター素子12の全体にわたって均等に含
浸されている。液体試料が貯蔵パッド10からエマージ
すると、第1フィルター素子12に含浸されている試薬
と接触し、ここで反応して特異的リガンドレセプター複
合体または複合体(複数)を形成する(試料は、適当な
分析物および分析物(複数)を含有していると思われる
)。 試薬運搬系として第1フィルター素子を使用することに
よって、分離試薬添加工程の必要性が取り除かれる。
【0021】第1フィルター素子12と隣接し、貯蔵パ
ッド10と遠位的である第2フィルター素子14は、液
体試料中に含まれるかまたはその中で形成される特異的
リガンドレセプター複合体を通過させるが、その中に含
まれる、最初の試料中に存在するか、またはその後、例
えば、第1フィルター素子12において形成された大き
い成分の通過を妨害するように作動する。
ッド10と遠位的である第2フィルター素子14は、液
体試料中に含まれるかまたはその中で形成される特異的
リガンドレセプター複合体を通過させるが、その中に含
まれる、最初の試料中に存在するか、またはその後、例
えば、第1フィルター素子12において形成された大き
い成分の通過を妨害するように作動する。
【0022】吸上膜16は、第2フィルター素子14に
隣接し、かつ第1フィルター素子12と遠位的である。 吸上膜16は、第1フィルター素子12および第2フィ
ルター素子14を通過した後、貯蔵パッド10中に受け
入れられた試料の実質的な量を吸収するのに充分な多孔
度および容量を有している。
隣接し、かつ第1フィルター素子12と遠位的である。 吸上膜16は、第1フィルター素子12および第2フィ
ルター素子14を通過した後、貯蔵パッド10中に受け
入れられた試料の実質的な量を吸収するのに充分な多孔
度および容量を有している。
【0023】吸上膜16の規定された帯域18中に固定
化物質が配置されており、該固定化物質は、第1フィル
ター素子12および第2フィルター素子14を通過する
試料中で形成されるかまたはその中に含まれている如何
なる特異的リガンドレセプター複合体を結合するように
作動する。
化物質が配置されており、該固定化物質は、第1フィル
ター素子12および第2フィルター素子14を通過する
試料中で形成されるかまたはその中に含まれている如何
なる特異的リガンドレセプター複合体を結合するように
作動する。
【0024】使用する際に、液体試料は図2に示した装
置の貯蔵パッド10に供給される。該試料は、第1フィ
ルター素子12を介して移動し、ここで標的分析物は、
試料中に存在する場合は、標識化試薬と結合する。該試
料は、第2フィルター素子14を介して移動し続け、こ
こで試料中に存在する不必要な成分がトラップされ、吸
上膜16の中に移動する。次に、標識化分析物は、存在
する場合は、検査指標域18と結合して、肉眼で検出可
能な信号を生じる。
置の貯蔵パッド10に供給される。該試料は、第1フィ
ルター素子12を介して移動し、ここで標的分析物は、
試料中に存在する場合は、標識化試薬と結合する。該試
料は、第2フィルター素子14を介して移動し続け、こ
こで試料中に存在する不必要な成分がトラップされ、吸
上膜16の中に移動する。次に、標識化分析物は、存在
する場合は、検査指標域18と結合して、肉眼で検出可
能な信号を生じる。
【0025】他方、免疫状態検査(immunstat
us assays)は、図2に示す装置の第2フィ
ルター素子14に試料を供給することによって行うこと
ができる。次に、緩衝溶液が貯蔵パッド10に供給され
、該溶液が第1フィルター素子12を介して移動し、そ
こで標識化試薬が再構成される。該溶液と試薬が第2フ
ィルター素子14を介して移動し、ここで標的分析物は
、存在する場合は、標識化試薬と結合し、吸上膜16の
中に移動する。次に、標識化分析物は、存在する場合は
、検査指標域18と結合して、肉眼で検出可能な信号を
生じる。
us assays)は、図2に示す装置の第2フィ
ルター素子14に試料を供給することによって行うこと
ができる。次に、緩衝溶液が貯蔵パッド10に供給され
、該溶液が第1フィルター素子12を介して移動し、そ
こで標識化試薬が再構成される。該溶液と試薬が第2フ
ィルター素子14を介して移動し、ここで標的分析物は
、存在する場合は、標識化試薬と結合し、吸上膜16の
中に移動する。次に、標識化分析物は、存在する場合は
、検査指標域18と結合して、肉眼で検出可能な信号を
生じる。
【0026】図3に関しては、共通貯蔵パッド110、
第1フィルター素子112Aおよび112B、第2フィ
ルター素子114Aおよび114B、ならびに規定され
た検査指標域118Aおよび118B中に配置された固
定化物質を含有する吸上膜116Aおよび116Bが基
板120上に配置されている。共通貯蔵パッド110は
、検査される液体試料を受け入れかつ収容するのに充分
な多孔度および容量を有している。第1フィルター素子
112Aおよび112Bは、パッド110の容量に対し
て相対的に小さい共通貯蔵パッド110の表面に隣接し
、かつ接して横切り、該貯蔵パッド110から第1フィ
ルター素子112Aおよび112Bまでの液体試料の通
過が計量される。特異的リガンドレセプター複合体を生
成する試薬が第1フィルター素子112Aおよび112
Bの全体にわたって均等に含浸されている。第2フィル
ター素子114Aおよび114Bは、各々、第1フィル
ター素子112Aおよび112Bに隣接し、かつ共通貯
蔵パッド110と遠位的であり、液体試料中で形成され
た特異的リガンドレセプター複合体を通過させるが、そ
の中に含まれる大きい成分の通過を妨害するように作動
する。吸上膜116Aおよび116Bは、共通貯蔵パッ
ド110中に受け入れられた試料の実質的な量を吸収す
るのに充分な多孔度および容量を有している。帯域11
8Aおよび118Aにおける固定化物質は、形成された
如何なる特異的リガンドレセプター複合体と結合するの
にも使用することができる。
第1フィルター素子112Aおよび112B、第2フィ
ルター素子114Aおよび114B、ならびに規定され
た検査指標域118Aおよび118B中に配置された固
定化物質を含有する吸上膜116Aおよび116Bが基
板120上に配置されている。共通貯蔵パッド110は
、検査される液体試料を受け入れかつ収容するのに充分
な多孔度および容量を有している。第1フィルター素子
112Aおよび112Bは、パッド110の容量に対し
て相対的に小さい共通貯蔵パッド110の表面に隣接し
、かつ接して横切り、該貯蔵パッド110から第1フィ
ルター素子112Aおよび112Bまでの液体試料の通
過が計量される。特異的リガンドレセプター複合体を生
成する試薬が第1フィルター素子112Aおよび112
Bの全体にわたって均等に含浸されている。第2フィル
ター素子114Aおよび114Bは、各々、第1フィル
ター素子112Aおよび112Bに隣接し、かつ共通貯
蔵パッド110と遠位的であり、液体試料中で形成され
た特異的リガンドレセプター複合体を通過させるが、そ
の中に含まれる大きい成分の通過を妨害するように作動
する。吸上膜116Aおよび116Bは、共通貯蔵パッ
ド110中に受け入れられた試料の実質的な量を吸収す
るのに充分な多孔度および容量を有している。帯域11
8Aおよび118Aにおける固定化物質は、形成された
如何なる特異的リガンドレセプター複合体と結合するの
にも使用することができる。
【0027】使用する際に、液体試料は共通貯蔵パッド
110に供給され、該試料は第1フィルター素子112
Aおよび112Bを介して移動し、ここで標的分析物が
、試料中に存在する場合は、そこに含浸されている標識
化試薬と結合し、第2フィルター素子114Aおよび1
14Bを介して移動し続け、ここで液体試料中の望まし
くない成分がトラップされ、吸上膜116Aおよび11
6B中に移動する。標的標識化分析物は、存在する場合
は、検査指標域118Aおよび118Bと結合する。 したがって、図3の具体例は、単一の試料を用いる場合
、2つの分析物を同時にかつ独立して検査するかまたは
同一分析物に関して2つの平行検査をすることができる
。
110に供給され、該試料は第1フィルター素子112
Aおよび112Bを介して移動し、ここで標的分析物が
、試料中に存在する場合は、そこに含浸されている標識
化試薬と結合し、第2フィルター素子114Aおよび1
14Bを介して移動し続け、ここで液体試料中の望まし
くない成分がトラップされ、吸上膜116Aおよび11
6B中に移動する。標的標識化分析物は、存在する場合
は、検査指標域118Aおよび118Bと結合する。 したがって、図3の具体例は、単一の試料を用いる場合
、2つの分析物を同時にかつ独立して検査するかまたは
同一分析物に関して2つの平行検査をすることができる
。
【0028】図4に関しては、図2に示すような検査装
置がケーシング222に囲まれている。ケーシング22
2は、貯蔵パッド210のすぐ上方にある穴部224お
よび検査指標域218および検査指標制御域228のす
ぐ上方にある観察窓226を有している。窓226は、
簡単な開口であるか、または帯域218および228を
保護するが肉眼で検査することができる透明な物質から
なっていてよい。液体試料は、開口224を介して添加
され、貯蔵パッド210によって吸収される。次に、適
当な標識化試薬を担持している第1フィルター素子21
2を介して移動し、第2フィルター素子214を介し、
ここで試料中の不必要な成分がトラップされ、吸上膜2
16中に移動し、ここで標識化分析物が、存在する場合
は、検査指標域218と結合する。未結合の標識化試料
は、検査指標制御域228と結合する。両指標域218
および228は、観察窓226を介して肉眼で見ること
ができる。
置がケーシング222に囲まれている。ケーシング22
2は、貯蔵パッド210のすぐ上方にある穴部224お
よび検査指標域218および検査指標制御域228のす
ぐ上方にある観察窓226を有している。窓226は、
簡単な開口であるか、または帯域218および228を
保護するが肉眼で検査することができる透明な物質から
なっていてよい。液体試料は、開口224を介して添加
され、貯蔵パッド210によって吸収される。次に、適
当な標識化試薬を担持している第1フィルター素子21
2を介して移動し、第2フィルター素子214を介し、
ここで試料中の不必要な成分がトラップされ、吸上膜2
16中に移動し、ここで標識化分析物が、存在する場合
は、検査指標域218と結合する。未結合の標識化試料
は、検査指標制御域228と結合する。両指標域218
および228は、観察窓226を介して肉眼で見ること
ができる。
【0029】図5に関しては、プラスチックのような水
分耐性物質によって製造された基板320が、仕切り3
22によって、複数の等価領域311A、311B、3
11C、311D、311Eおよび311Fに分割され
ている。各領域は、仕切り322間で、基板320中に
全て配置された第1フィルター素子312、第2フィル
ター素子314、および吸上膜316からなっている。 各第1フィルター素子312中に同一または異なってい
る試薬を設置することができ、同一分析物に関する平行
試験または同一試料について複数の異なる検査を行うこ
とができる。各吸上膜316は、対応する吸上膜と結合
している第1フィルター素子中における試薬に対して適
切でありかつ規定された検査指標域318中に設置され
た固定化物質を含有する。試料が設置された共通貯蔵パ
ッド310は、複数の領域に対して中央に設置されてい
る。
分耐性物質によって製造された基板320が、仕切り3
22によって、複数の等価領域311A、311B、3
11C、311D、311Eおよび311Fに分割され
ている。各領域は、仕切り322間で、基板320中に
全て配置された第1フィルター素子312、第2フィル
ター素子314、および吸上膜316からなっている。 各第1フィルター素子312中に同一または異なってい
る試薬を設置することができ、同一分析物に関する平行
試験または同一試料について複数の異なる検査を行うこ
とができる。各吸上膜316は、対応する吸上膜と結合
している第1フィルター素子中における試薬に対して適
切でありかつ規定された検査指標域318中に設置され
た固定化物質を含有する。試料が設置された共通貯蔵パ
ッド310は、複数の領域に対して中央に設置されてい
る。
【0030】使用する際に、貯蔵パッド310に置かれ
た液体試料は、同時に、第1フィルター素子312を介
して移動し、ここで標的分析物が、存在する場合は、標
識化抗体と結合する。次に、該試料は、第2フィルター
素子314を通過し、吸上膜316中に至り、ここで標
識化標的分析物が、存在する場合は、検査指標域318
中の対応する固定化物質と結合して、肉眼で検出可能な
信号を生じる。
た液体試料は、同時に、第1フィルター素子312を介
して移動し、ここで標的分析物が、存在する場合は、標
識化抗体と結合する。次に、該試料は、第2フィルター
素子314を通過し、吸上膜316中に至り、ここで標
識化標的分析物が、存在する場合は、検査指標域318
中の対応する固定化物質と結合して、肉眼で検出可能な
信号を生じる。
【0031】図6に示す具体例は、免疫状態検査におい
て用いることができる。図2で示すような検査装置がケ
ーシング522に囲まれている。ケーシング522は、
貯蔵パッド510のすぐ上方にある第1の開口524、
第2フィルター素子のすぐ上方にある第2の開口530
、ならびに検査指標域518および検査指標制御域52
8のすぐ上方にある観察窓526を有している。窓52
6は、簡単な開口であってもよく、または帯域518お
よび528を保護するが肉眼で検査することができる透
明な物質からなっていてよい。使用する際に、試料(例
えば、血清)は、第2の開口530を介して第2フィル
ター素子514に直接供給される。次いで、緩衝溶液が
第1の開口524を介して貯蔵パッド510に供給され
、該溶液は第1フィルター素子512を介して移動し、
そこで標識化試薬が再構成される。該溶液と試薬は、第
2フィルター素子514を介して移動し、ここで標的分
析物が、存在する場合は、標識化試薬と結合し、吸上膜
516まで移動する。次いで、標識化分析物は、存在す
る場合は、検査指標域518と結合して、肉眼で検出可
能な信号を生じる。未結合の標識化試薬は、検査指標制
御域528と結合する。両指標域518および528は
、観察窓526を介して肉眼で観察される。
て用いることができる。図2で示すような検査装置がケ
ーシング522に囲まれている。ケーシング522は、
貯蔵パッド510のすぐ上方にある第1の開口524、
第2フィルター素子のすぐ上方にある第2の開口530
、ならびに検査指標域518および検査指標制御域52
8のすぐ上方にある観察窓526を有している。窓52
6は、簡単な開口であってもよく、または帯域518お
よび528を保護するが肉眼で検査することができる透
明な物質からなっていてよい。使用する際に、試料(例
えば、血清)は、第2の開口530を介して第2フィル
ター素子514に直接供給される。次いで、緩衝溶液が
第1の開口524を介して貯蔵パッド510に供給され
、該溶液は第1フィルター素子512を介して移動し、
そこで標識化試薬が再構成される。該溶液と試薬は、第
2フィルター素子514を介して移動し、ここで標的分
析物が、存在する場合は、標識化試薬と結合し、吸上膜
516まで移動する。次いで、標識化分析物は、存在す
る場合は、検査指標域518と結合して、肉眼で検出可
能な信号を生じる。未結合の標識化試薬は、検査指標制
御域528と結合する。両指標域518および528は
、観察窓526を介して肉眼で観察される。
【0032】配置に関係なく、フィルター素子およびパ
ッドは、試料の通過に関する共通領域を規定するように
接触しているか、またはお互いに重なりあっている。吸
上膜が高い面積:厚さ比を有しているが、それに接して
いるフィルター素子が比較的低い面積:厚さ比を有して
いる場合が好都合であることがわかった。充分な共通領
域を確保するために、吸上膜と重ね合わせて接している
フィルター素子を配置することが好都合である。
ッドは、試料の通過に関する共通領域を規定するように
接触しているか、またはお互いに重なりあっている。吸
上膜が高い面積:厚さ比を有しているが、それに接して
いるフィルター素子が比較的低い面積:厚さ比を有して
いる場合が好都合であることがわかった。充分な共通領
域を確保するために、吸上膜と重ね合わせて接している
フィルター素子を配置することが好都合である。
【0033】検査指標域の前方に少なくとも1つのフィ
ルター素子を一体化することによって、前記マイグレー
ション型検査法と比較して、感度の増大が達成される。 フィルターは、固有の疎水性を減少させるために処理し
ておくのが好ましく、該フィルターは、液体試料中の不
必要な成分をトラップし、かつ標識化分析物の通過を妨
害しない。したがって、検査指標域と結合する分析物の
量が比例して多くなり、さらに正確な検査の結果が達成
される。
ルター素子を一体化することによって、前記マイグレー
ション型検査法と比較して、感度の増大が達成される。 フィルターは、固有の疎水性を減少させるために処理し
ておくのが好ましく、該フィルターは、液体試料中の不
必要な成分をトラップし、かつ標識化分析物の通過を妨
害しない。したがって、検査指標域と結合する分析物の
量が比例して多くなり、さらに正確な検査の結果が達成
される。
【0034】さらに、適当な組織(texture)お
よび孔の大きさを有する膜を選択することによって、第
2フィルター素子は制御された細胞溶解システムとして
作用することができる。例えば、全血試料で行われる免
疫状態検査において、全血細胞の完全性を維持するが血
清が透過移動する膜を第2フィルター素子として選択す
ることが好都合である。これは、検査指標域中への拡散
による血液細胞溶解に関連する褪色を防止する。
よび孔の大きさを有する膜を選択することによって、第
2フィルター素子は制御された細胞溶解システムとして
作用することができる。例えば、全血試料で行われる免
疫状態検査において、全血細胞の完全性を維持するが血
清が透過移動する膜を第2フィルター素子として選択す
ることが好都合である。これは、検査指標域中への拡散
による血液細胞溶解に関連する褪色を防止する。
【0035】免疫状態検査を行うために該装置を使用す
る場合、この付加的フィルター素子は、直接試料を受け
入れるのに使用することもできる。一般に、これらの検
査は、フィルター上に直接スポットした全血または血清
の試料について行われる。この後、貯蔵パッドに緩衝溶
液が供給される。代表的な緩衝溶液としては、リン酸緩
衝溶液、食塩水、トリス(Tris)−HCl、および
水が挙げられるが、これらに限定されるものではない。 このタイプで検出され得る抗体の例としては、後天免疫
欠乏症候群(Acquired Immune D
eficiency Syndrome)、風疹、肝
炎、およびライム(Lymes)が挙げられるが、これ
らに限定されるものではない。
る場合、この付加的フィルター素子は、直接試料を受け
入れるのに使用することもできる。一般に、これらの検
査は、フィルター上に直接スポットした全血または血清
の試料について行われる。この後、貯蔵パッドに緩衝溶
液が供給される。代表的な緩衝溶液としては、リン酸緩
衝溶液、食塩水、トリス(Tris)−HCl、および
水が挙げられるが、これらに限定されるものではない。 このタイプで検出され得る抗体の例としては、後天免疫
欠乏症候群(Acquired Immune D
eficiency Syndrome)、風疹、肝
炎、およびライム(Lymes)が挙げられるが、これ
らに限定されるものではない。
【0036】検査感度衰退の他の原因、すなわち、試料
の溢流は、装置中に貯蔵パッドを一体化することによっ
て回避される。すなわち、貯蔵パッドは、多量の試料を
保持することができ、次いで、該試料は、次の帯域にお
ける有効な共通領域の結果として、装置を介して計量さ
れる。この本発明の態様は、例えば、装置に供給する試
料の量の測定を必要とせずに装置を尿の流れの中に置く
ことができるという点で家庭での使用に特に適している
。
の溢流は、装置中に貯蔵パッドを一体化することによっ
て回避される。すなわち、貯蔵パッドは、多量の試料を
保持することができ、次いで、該試料は、次の帯域にお
ける有効な共通領域の結果として、装置を介して計量さ
れる。この本発明の態様は、例えば、装置に供給する試
料の量の測定を必要とせずに装置を尿の流れの中に置く
ことができるという点で家庭での使用に特に適している
。
【0037】貯蔵パッド、第1フィルター素子、第2フ
ィルター素子、および吸上膜は、いくつかの濾過材から
成形される。貯蔵パッドに使用するための代表的なフィ
ルター物質としては、0.45〜60μmの範囲の大き
さの孔を有しているセルロース、ポリエステル、ポリウ
レタンおよび繊維ガラスのような低タンパク結合物質が
挙げられるが、これらに限定されるものではない。第1
フィルター素子に使用するための代表的な物質としては
、0.45〜60μmの範囲の大きさの孔を有している
セルロース物質[例えば、ワットマンペーパー(Wha
tman paper)ET31]または繊維ガラス
が挙げられるが、これらに限定されるものではない。第
2フィルター素子に使用するための代表的な物質は、疎
水性物質であり、0.45〜60μmの範囲の大きさの
孔を有するポリウレタン、ポリアセテート、セルロース
、繊維ガラス、およびナイロンが挙げられるが、これら
に限定されるものではない。吸上膜に使用するための代
表的な物質としては、ナイロン、セルロース、ポリスル
ホン、ポリ二フッ化ビニリデン、酢酸セルロース、ポリ
ウレタン、繊維ガラス、およびニトロセルロースが挙げ
られるが、これらに限定されるものではない。
ィルター素子、および吸上膜は、いくつかの濾過材から
成形される。貯蔵パッドに使用するための代表的なフィ
ルター物質としては、0.45〜60μmの範囲の大き
さの孔を有しているセルロース、ポリエステル、ポリウ
レタンおよび繊維ガラスのような低タンパク結合物質が
挙げられるが、これらに限定されるものではない。第1
フィルター素子に使用するための代表的な物質としては
、0.45〜60μmの範囲の大きさの孔を有している
セルロース物質[例えば、ワットマンペーパー(Wha
tman paper)ET31]または繊維ガラス
が挙げられるが、これらに限定されるものではない。第
2フィルター素子に使用するための代表的な物質は、疎
水性物質であり、0.45〜60μmの範囲の大きさの
孔を有するポリウレタン、ポリアセテート、セルロース
、繊維ガラス、およびナイロンが挙げられるが、これら
に限定されるものではない。吸上膜に使用するための代
表的な物質としては、ナイロン、セルロース、ポリスル
ホン、ポリ二フッ化ビニリデン、酢酸セルロース、ポリ
ウレタン、繊維ガラス、およびニトロセルロースが挙げ
られるが、これらに限定されるものではない。
【0038】パッドおよび膜を含む配列全体を、装置に
対して支持およびユニティを与える固体材料に装着する
。この支持体は、全検査内容物を含むのに適当でありす
つ検査ユーザーに好都合である大きさに切ったガラスま
たはプラスチックの薄いシートから構成されている。
対して支持およびユニティを与える固体材料に装着する
。この支持体は、全検査内容物を含むのに適当でありす
つ検査ユーザーに好都合である大きさに切ったガラスま
たはプラスチックの薄いシートから構成されている。
【0039】本発明の他の態様では、1以上の特定のタ
イプの標識化試薬および同数の対応するタイプの固定化
試薬の存在によって単一の液体試料中の複数の分析物を
検出することができる。該装置は、1つの第1フィルタ
ー素子の全体にわたって含浸される複数の標識化試薬お
よび吸上膜上のいくつかの検査指標域において規定され
た複数の対応する固定化物質を一方向的に供給すること
ができる。二方向性または多方向性の装置では、1組以
上の第1フィルター素子、第2フィルター素子および吸
上膜のような成分の組が共通貯蔵器と結合している。
イプの標識化試薬および同数の対応するタイプの固定化
試薬の存在によって単一の液体試料中の複数の分析物を
検出することができる。該装置は、1つの第1フィルタ
ー素子の全体にわたって含浸される複数の標識化試薬お
よび吸上膜上のいくつかの検査指標域において規定され
た複数の対応する固定化物質を一方向的に供給すること
ができる。二方向性または多方向性の装置では、1組以
上の第1フィルター素子、第2フィルター素子および吸
上膜のような成分の組が共通貯蔵器と結合している。
【0040】各々の場合、第1フィルター素子と一体化
している試薬は、液体試料との接触によって再構築させ
るために、該素子上または中で乾燥または凍結乾燥され
る。生成されて結合されたリガンドレセプター複合体の
特異性を増強するかまたは該複合体の数を増大し、した
がって、検査装置の感度を増大させるのに有用な他の試
薬は、試薬を含有しているフィルターパッドまたは2つ
のフィルターパッドのうち最初のフィルターパッド中に
含有されてもよい。これらの補助試薬としては、緩衝液
、洗剤および凝固防止剤が挙げられるが、これらに限定
されるものではない。
している試薬は、液体試料との接触によって再構築させ
るために、該素子上または中で乾燥または凍結乾燥され
る。生成されて結合されたリガンドレセプター複合体の
特異性を増強するかまたは該複合体の数を増大し、した
がって、検査装置の感度を増大させるのに有用な他の試
薬は、試薬を含有しているフィルターパッドまたは2つ
のフィルターパッドのうち最初のフィルターパッド中に
含有されてもよい。これらの補助試薬としては、緩衝液
、洗剤および凝固防止剤が挙げられるが、これらに限定
されるものではない。
【0041】第1ゾーンに隣接し、かつ第2フィルター
素子と遠位的である吸上膜上で制御として作用する追加
の検査指標域を含むことによって、該検査装置に、液体
試料が全装置の全体にわたって移動したか否かを示す内
部モニターが設置される。検査指標制御域は、一般に、
分析物に添加されたかまたは第1フィルター素子と一体
化した標識化試薬に対する固定化抗体(例えば、抗−イ
ムノグロブリン)を使用する。図2の態様に関して、例
えば、液体試料は、第1フィルター素子を介して移動し
、ここで標識化試薬を再構築し、吸上膜まで運搬する。 標的分析物と結合していない標識化試薬は、制御検査指
標域と結合し、試験の完了の指標が肉眼で検出される。
素子と遠位的である吸上膜上で制御として作用する追加
の検査指標域を含むことによって、該検査装置に、液体
試料が全装置の全体にわたって移動したか否かを示す内
部モニターが設置される。検査指標制御域は、一般に、
分析物に添加されたかまたは第1フィルター素子と一体
化した標識化試薬に対する固定化抗体(例えば、抗−イ
ムノグロブリン)を使用する。図2の態様に関して、例
えば、液体試料は、第1フィルター素子を介して移動し
、ここで標識化試薬を再構築し、吸上膜まで運搬する。 標的分析物と結合していない標識化試薬は、制御検査指
標域と結合し、試験の完了の指標が肉眼で検出される。
【0042】一方向性、二方向性、または多方向性とし
て構成されている検査装置全体を液体不透過性プラスチ
ック中に入れてもよい。この容器は、通常、試料を受け
入れるために、貯蔵フィルターの上方に開口を有してい
る。検査結果を観察するために、容器全体が透明である
か、または分析物検出ゾーン上の一部分が透明であって
よい。プラスチックに入れた装置は、家庭用診断装置に
おいて使用するために特に有用かつ好都合であるが、処
理紙のような他の物質を用いることもできる。
て構成されている検査装置全体を液体不透過性プラスチ
ック中に入れてもよい。この容器は、通常、試料を受け
入れるために、貯蔵フィルターの上方に開口を有してい
る。検査結果を観察するために、容器全体が透明である
か、または分析物検出ゾーン上の一部分が透明であって
よい。プラスチックに入れた装置は、家庭用診断装置に
おいて使用するために特に有用かつ好都合であるが、処
理紙のような他の物質を用いることもできる。
【0043】さらに、開口周囲の上方の表面は、カップ
様容器を形成するように湾曲して下方に広がり、貯蔵パ
ッドの一部分で終わっており、かつ強く嵌合している。 この方法では、装置中に導入された試料の量が計量され
、該試料は、装置の如何なる成分をも迂回できない。
様容器を形成するように湾曲して下方に広がり、貯蔵パ
ッドの一部分で終わっており、かつ強く嵌合している。 この方法では、装置中に導入された試料の量が計量され
、該試料は、装置の如何なる成分をも迂回できない。
【0044】本発明は、競合検査またはサンドイッチ検
査のいずれについても使用することができる。競合検査
では、標識化抗原(標的抗原と同一である)は、分離し
て、または第1フィルター素子の一部分としてさらに含
有される。この標識化抗原は、検出ゾーン上での結合に
関して、試料からの抗原と競合する。
査のいずれについても使用することができる。競合検査
では、標識化抗原(標的抗原と同一である)は、分離し
て、または第1フィルター素子の一部分としてさらに含
有される。この標識化抗原は、検出ゾーン上での結合に
関して、試料からの抗原と競合する。
【0045】本発明の診断装置および方法は、如何なる
リガンド−レセプター反応においても使用することがで
き、抗体、抗原、およびハプテンのような免疫化学的成
分を有する反応に関して特に適している。抗原またはハ
プテンのようなリガンド含有分子の検出が望まれるこれ
らの検査において、標識化試薬および検査指標域におい
て固定化された物質は両方とも、リガンド結合分子であ
る。特に、該リガンドが抗原である場合、標識化試薬と
固定化試薬は両方とも抗体である。
リガンド−レセプター反応においても使用することがで
き、抗体、抗原、およびハプテンのような免疫化学的成
分を有する反応に関して特に適している。抗原またはハ
プテンのようなリガンド含有分子の検出が望まれるこれ
らの検査において、標識化試薬および検査指標域におい
て固定化された物質は両方とも、リガンド結合分子であ
る。特に、該リガンドが抗原である場合、標識化試薬と
固定化試薬は両方とも抗体である。
【0046】抗体は、モノクローナルまたはポリクロー
ナルのいずれであってもよく、この生成方法は当技術分
野において周知である。最大の結合を達成するために、
第1フィルター素子において標識化モノクローナル抗体
を、そして検査指標域においてポリクローナル抗体を使
用するのが好ましい。しかし、モノクローナル−ポリク
ローナル抗体の如何なる組み合わせも用いることができ
る。家庭用妊娠および排卵予測装置の場合、抗体は、各
々、ヒト絨毛性ゴナドトロピンおよび黄体化ホルモンか
ら得られ、装置中に入れられる。
ナルのいずれであってもよく、この生成方法は当技術分
野において周知である。最大の結合を達成するために、
第1フィルター素子において標識化モノクローナル抗体
を、そして検査指標域においてポリクローナル抗体を使
用するのが好ましい。しかし、モノクローナル−ポリク
ローナル抗体の如何なる組み合わせも用いることができ
る。家庭用妊娠および排卵予測装置の場合、抗体は、各
々、ヒト絨毛性ゴナドトロピンおよび黄体化ホルモンか
ら得られ、装置中に入れられる。
【0047】抗体のようなリガンド結合分子の検出が望
まれるこれらの場合には、試薬として標識したマウス抗
ヒトイムノグロブリンGを用い、上記のように、第1フ
ィルター素子中に一体化することができ、標的抗体に特
異的な抗原が検査指標域中に固定化される。任意の天然
または合成抗原ならびに抗原活性を有するポリペプチド
鎖を使用することができる。装置上に固定化することが
できる抗原の例としては、風疹、ライムズ(Lymes
)、後天免疫欠乏症候群、肝炎、トキソプラスマ症、サ
イトメガロウイルス、およびエプスタイン−バーウイル
スが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
まれるこれらの場合には、試薬として標識したマウス抗
ヒトイムノグロブリンGを用い、上記のように、第1フ
ィルター素子中に一体化することができ、標的抗体に特
異的な抗原が検査指標域中に固定化される。任意の天然
または合成抗原ならびに抗原活性を有するポリペプチド
鎖を使用することができる。装置上に固定化することが
できる抗原の例としては、風疹、ライムズ(Lymes
)、後天免疫欠乏症候群、肝炎、トキソプラスマ症、サ
イトメガロウイルス、およびエプスタイン−バーウイル
スが挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【0048】単一の試料における1以上の抗体の同時検
出が望まれる検査法では、同一の標識化抗ヒトイムノグ
ロブリン(試薬)が、試料中に存在する全てのヒト抗体
を認識し、これと結合するので、吸上膜上の異なった指
標域における各標的抗体が抗原と一緒になることが唯一
必要である。
出が望まれる検査法では、同一の標識化抗ヒトイムノグ
ロブリン(試薬)が、試料中に存在する全てのヒト抗体
を認識し、これと結合するので、吸上膜上の異なった指
標域における各標的抗体が抗原と一緒になることが唯一
必要である。
【0049】該装置において使用される標識は、直接ま
たは間接のいずれであってもよい。直接標識は、検査結
果を肉眼で観察するために、追加の工程を必要としない
点で好ましい。直接標識の例としては、金属ゾル、染料
ゾル、粒子状ラテックス、色指示薬、リポソームに含有
されている着色物質、および炭素ゾルのような非金属ゾ
ルが挙げられるが、これらに限定されるものできない。
たは間接のいずれであってもよい。直接標識は、検査結
果を肉眼で観察するために、追加の工程を必要としない
点で好ましい。直接標識の例としては、金属ゾル、染料
ゾル、粒子状ラテックス、色指示薬、リポソームに含有
されている着色物質、および炭素ゾルのような非金属ゾ
ルが挙げられるが、これらに限定されるものできない。
【0050】さらに、本発明は、前記装置において使用
するのに特に適切であるが、他の免疫学的検査において
もよく使用することができる免疫化学的標識、特に、免
疫学的リガンドまたはリガンド結合分子が微粒子状カー
ボンブラックの表面に直接的または間接的に結合される
免疫化学的標識を提供するものである。
するのに特に適切であるが、他の免疫学的検査において
もよく使用することができる免疫化学的標識、特に、免
疫学的リガンドまたはリガンド結合分子が微粒子状カー
ボンブラックの表面に直接的または間接的に結合される
免疫化学的標識を提供するものである。
【0051】免疫学的標識は、図式的に、C〜Lまたは
C〜X:L[ここで、Cは、微粒子状カーボンブラック
であり、“〜”は、吸着結合を表しており、Lはリガン
ド−またはリガンド結合ユニットを含有する成分であり
、Xは結合剤であり、“:”は、共有結合を表す]で示
される。
C〜X:L[ここで、Cは、微粒子状カーボンブラック
であり、“〜”は、吸着結合を表しており、Lはリガン
ド−またはリガンド結合ユニットを含有する成分であり
、Xは結合剤であり、“:”は、共有結合を表す]で示
される。
【0052】Lは、リガンド−またはリガンド結合ユニ
ットのみで構成されていてよく、この場合、炭素上に直
接吸着される。他方、リガンド−またはリガンド結合ユ
ニットは、共有的または免疫学的な架橋基(本明細書で
は、“*”で示す)と結合することができる。例えば、
リガンド−またはリガンド結合ユニットは、グルタルア
ルデヒドのような結合剤と共有的に結合することができ
、次に、ウシ血清アルブミン(BSA)のようなタンパ
ク様の架橋基と共有的に結合し、次いで、炭素上に吸着
される。同様に、アビジンまたはストレプトアビジンは
、ビオチンを介してリガンド−またはリガンド結合分子
と結合することができ、アビジンまたはストレプトアビ
ジンは炭素粒子上に吸着される。他方、リガンド−また
はリガンド結合ユニットとして作用する第1抗体(1°
Ab)は、第2抗体(2°Ab)と免疫学的に結合し、
該第2抗体は、炭素粒子に吸着される。具体的なC〜L
の代表的な構造としては、以下のものが挙げられる:C
〜{リガンド}、C〜{リガンド結合分子}、C〜{タ
ンパク:X:リガンド}、C〜{タンパク:X:リガン
ド結合分子}、C〜{2°Ab*1°Ab}、およびC
〜{タンパク:X:2°Ab*1°Ab}。
ットのみで構成されていてよく、この場合、炭素上に直
接吸着される。他方、リガンド−またはリガンド結合ユ
ニットは、共有的または免疫学的な架橋基(本明細書で
は、“*”で示す)と結合することができる。例えば、
リガンド−またはリガンド結合ユニットは、グルタルア
ルデヒドのような結合剤と共有的に結合することができ
、次に、ウシ血清アルブミン(BSA)のようなタンパ
ク様の架橋基と共有的に結合し、次いで、炭素上に吸着
される。同様に、アビジンまたはストレプトアビジンは
、ビオチンを介してリガンド−またはリガンド結合分子
と結合することができ、アビジンまたはストレプトアビ
ジンは炭素粒子上に吸着される。他方、リガンド−また
はリガンド結合ユニットとして作用する第1抗体(1°
Ab)は、第2抗体(2°Ab)と免疫学的に結合し、
該第2抗体は、炭素粒子に吸着される。具体的なC〜L
の代表的な構造としては、以下のものが挙げられる:C
〜{リガンド}、C〜{リガンド結合分子}、C〜{タ
ンパク:X:リガンド}、C〜{タンパク:X:リガン
ド結合分子}、C〜{2°Ab*1°Ab}、およびC
〜{タンパク:X:2°Ab*1°Ab}。
【0053】第2に、結合剤Yが炭素粒子上に吸着され
かつリガンド−またはリガンド結合ユニットと共有的に
結合して、一般式:C〜Y:Lで示される標識を形成す
る。該結合剤Yは、以下にさらに詳細に説明するような
単一の種類の分子Y’であるか、または、結合剤:タン
パク:結合剤のような成分であってよい:C〜Y’:{
リガンド}、C〜Y’:{リガンド結合分子}、C〜Y
’:タンパク:X:{リガンド}、およびC〜Y’:タ
ンパク:X:{リガンド結合分子}。
かつリガンド−またはリガンド結合ユニットと共有的に
結合して、一般式:C〜Y:Lで示される標識を形成す
る。該結合剤Yは、以下にさらに詳細に説明するような
単一の種類の分子Y’であるか、または、結合剤:タン
パク:結合剤のような成分であってよい:C〜Y’:{
リガンド}、C〜Y’:{リガンド結合分子}、C〜Y
’:タンパク:X:{リガンド}、およびC〜Y’:タ
ンパク:X:{リガンド結合分子}。
【0054】これら2つの具体例の間の主な相違点は、
第1の具体例では、リガンド、リガンド結合分子、また
はタンパク(例えば、抗体、ウシ血清アルブミン、また
はアビジン)は、炭素粒子上に吸着されるが、第2の具
体例では、結合剤として作用する特定のクラスの有機化
合物の一つが炭素粒子上に吸着され、かつリガンド、リ
ガンド結合分子またはタンパクと共有的に結合するとい
うことである。
第1の具体例では、リガンド、リガンド結合分子、また
はタンパク(例えば、抗体、ウシ血清アルブミン、また
はアビジン)は、炭素粒子上に吸着されるが、第2の具
体例では、結合剤として作用する特定のクラスの有機化
合物の一つが炭素粒子上に吸着され、かつリガンド、リ
ガンド結合分子またはタンパクと共有的に結合するとい
うことである。
【0055】前記炭素ゾルは、多くの方法によって製造
することができる。リガンドおよびリガンド結合分子は
、炭素粒子の懸濁液に単に添加され、C〜{リガンド}
およびC〜{リガンド結合分子}構造物を生成すること
ができる。リガンドまたはリガンド結合分子が間接的に
結合している場合、{タンパク:X:リガンド}、{タ
ンパク:X:リガンド結合分子}、{2°Ab*1°A
b}、または{タンパク:X:2°Ab*1°Ab}の
ような完全な炭素粒子不含構造物が生成され、次いで、
吸着のために炭素粒子の懸濁液に添加することができる
。他方、まず、炭素粒子不含構造物の末端部を炭素粒子
上に吸着させ、次いで、残存する炭素粒子不含構造物を
化学的に導入することができる。例えば、ウシ血清アル
ブミン、アビジン、またはストレプトアビジンのような
タンパクは、炭素粒子上に吸着され、次いで、例えば、
ウシ血清アルブミンに対してはグルタルアルデヒドを、
またはアビジンもしくはストレプトアビジンに対しては
ビオチンを用いて、リガンドまたはリガンド結合分子に
結合させることができる。同様に、2°抗体を炭素粒子
上に吸着させ、次いで、1°抗体を免疫学的に結合させ
ることができる。
することができる。リガンドおよびリガンド結合分子は
、炭素粒子の懸濁液に単に添加され、C〜{リガンド}
およびC〜{リガンド結合分子}構造物を生成すること
ができる。リガンドまたはリガンド結合分子が間接的に
結合している場合、{タンパク:X:リガンド}、{タ
ンパク:X:リガンド結合分子}、{2°Ab*1°A
b}、または{タンパク:X:2°Ab*1°Ab}の
ような完全な炭素粒子不含構造物が生成され、次いで、
吸着のために炭素粒子の懸濁液に添加することができる
。他方、まず、炭素粒子不含構造物の末端部を炭素粒子
上に吸着させ、次いで、残存する炭素粒子不含構造物を
化学的に導入することができる。例えば、ウシ血清アル
ブミン、アビジン、またはストレプトアビジンのような
タンパクは、炭素粒子上に吸着され、次いで、例えば、
ウシ血清アルブミンに対してはグルタルアルデヒドを、
またはアビジンもしくはストレプトアビジンに対しては
ビオチンを用いて、リガンドまたはリガンド結合分子に
結合させることができる。同様に、2°抗体を炭素粒子
上に吸着させ、次いで、1°抗体を免疫学的に結合させ
ることができる。
【0056】ハプテン、抗原、もしくは抗体のようなリ
ガンドおよびリガンド結合分子を共有的に結合するため
またはタンパク架橋基を共有的に結合するために好適な
結合試薬Y’としては、例えば、マレイミド、スクシン
イミド、フェニルアジド、グルタルアルデヒド、N−ヒ
ドロキシスクシンイミドエステル、フェニルイソチオシ
アナート、4,4’−ジイソチオシアノスチルベン−2
,2’−ジスルホン酸、4−N,N−ジチメルアミノア
ゾベンゼン−4’−イソチオシアナート、フルオレセイ
ンイソチオシアナート、ローダミンイソチオシアナート
のようなイミド、アジド、イソチオシアナート、イミド
エステルおよびジアルデヒドが挙げられる。
ガンドおよびリガンド結合分子を共有的に結合するため
またはタンパク架橋基を共有的に結合するために好適な
結合試薬Y’としては、例えば、マレイミド、スクシン
イミド、フェニルアジド、グルタルアルデヒド、N−ヒ
ドロキシスクシンイミドエステル、フェニルイソチオシ
アナート、4,4’−ジイソチオシアノスチルベン−2
,2’−ジスルホン酸、4−N,N−ジチメルアミノア
ゾベンゼン−4’−イソチオシアナート、フルオレセイ
ンイソチオシアナート、ローダミンイソチオシアナート
のようなイミド、アジド、イソチオシアナート、イミド
エステルおよびジアルデヒドが挙げられる。
【0057】第1の具体例の場合のように、リガンド(
またはリガンド結合分子)、架橋タンパク、および結合
剤を反応させることによって生成される完全な炭素粒子
不含構造物は、微粒子状カーボンブラックの表面上に吸
着されることができる。他方、まず、結合試薬だけを微
粒子状カーボンブラック上に吸着させ、次いで、リガン
ド、リガンド結合分子、および/または架橋タンパクと
共有的に結合させることができる。
またはリガンド結合分子)、架橋タンパク、および結合
剤を反応させることによって生成される完全な炭素粒子
不含構造物は、微粒子状カーボンブラックの表面上に吸
着されることができる。他方、まず、結合試薬だけを微
粒子状カーボンブラック上に吸着させ、次いで、リガン
ド、リガンド結合分子、および/または架橋タンパクと
共有的に結合させることができる。
【0058】上記方法において、一般的に、微粒子状カ
ーボンブラックの水性懸濁液に、例えばポリアルキレン
グリコールまたはポリサッカリドのような懸濁補助剤を
添加することが望ましい。以下に説明するように、次に
、免疫学的リガンドまたはリガンド結合分子を微粒子状
カーボンブラックに結合した後、保護剤として同様の物
質を添加する。この段階で添加された量は、比較的少量
であり、一般的には炭素粒子の懸濁液中で単に助長する
だけに充分な量である。
ーボンブラックの水性懸濁液に、例えばポリアルキレン
グリコールまたはポリサッカリドのような懸濁補助剤を
添加することが望ましい。以下に説明するように、次に
、免疫学的リガンドまたはリガンド結合分子を微粒子状
カーボンブラックに結合した後、保護剤として同様の物
質を添加する。この段階で添加された量は、比較的少量
であり、一般的には炭素粒子の懸濁液中で単に助長する
だけに充分な量である。
【0059】次いで、結合試薬を、同時にまたは逐次、
(i)免疫学的リガンドおよびリガンド結合分子と共有
的に結合し、かつ(ii)微粒子状カーボンブラック上
で吸着させる。個々の結合試薬に因るが、結合反応は、
一般に、約7.0〜約9.5のpHで、数時間行われる
。
(i)免疫学的リガンドおよびリガンド結合分子と共有
的に結合し、かつ(ii)微粒子状カーボンブラック上
で吸着させる。個々の結合試薬に因るが、結合反応は、
一般に、約7.0〜約9.5のpHで、数時間行われる
。
【0060】種々の市販の入手可能な微粒子状カーボン
ブラックとしては、モナーク(Monarch)1,0
00、120もしくは880、バルカン(Vulcan
)XC72もしくはXC72R、またはリーガル(Re
gal)250Rもしくは500Rのようなものを使用
することができる。如何なる個々の原料の妥当性も、緩
衝液中で物質をホモジネートし、光学密度を測定するこ
とによって容易に決定することができる。
ブラックとしては、モナーク(Monarch)1,0
00、120もしくは880、バルカン(Vulcan
)XC72もしくはXC72R、またはリーガル(Re
gal)250Rもしくは500Rのようなものを使用
することができる。如何なる個々の原料の妥当性も、緩
衝液中で物質をホモジネートし、光学密度を測定するこ
とによって容易に決定することができる。
【0061】好ましくは、共有的または受動的に結合し
たリガンドまたはリガンド結合分子を有する微粒子状カ
ーボンブラックをポリアルキレングリコールまたはポリ
サッカリド保護剤で処理して、疎水性を最小にし、分散
性を最大にする。このようなコーティングに適している
物質は、約100〜約20,000、好ましくは約5,
000〜約12,000の分子量を有しているポリエチ
レングリコール、および約10,000〜約500,0
00、好ましくは約10,000〜約50,000の分
子量を有しているデキストランのような保護ポリサッカ
リド類である。このコーティングは、ポリエチレングリ
コールまたはデキストランの0.5〜5重量/容量%水
溶液と、結合したカーボンブラックを接触させることに
よって容易に達成することができる。
たリガンドまたはリガンド結合分子を有する微粒子状カ
ーボンブラックをポリアルキレングリコールまたはポリ
サッカリド保護剤で処理して、疎水性を最小にし、分散
性を最大にする。このようなコーティングに適している
物質は、約100〜約20,000、好ましくは約5,
000〜約12,000の分子量を有しているポリエチ
レングリコール、および約10,000〜約500,0
00、好ましくは約10,000〜約50,000の分
子量を有しているデキストランのような保護ポリサッカ
リド類である。このコーティングは、ポリエチレングリ
コールまたはデキストランの0.5〜5重量/容量%水
溶液と、結合したカーボンブラックを接触させることに
よって容易に達成することができる。
【0062】また、他の具体例では、免疫化学的標識は
、約0.01〜約0.5%の範囲の濃度の、少なくとも
1つの生物学的に許容されるイオンまたはノニオン界面
活性剤、例えば、長鎖アルキル・トリメチルアンモニウ
ム塩、デオキシコール酸ナトリウム、トリトン(Tri
ton)、トゥイーン(Tween)などで処理される
。同一または異なるタイプの洗剤によるこのような処理
を数回行うことができるが、その後、免疫化学的標識を
洗浄して、過剰量の洗剤を除去する。
、約0.01〜約0.5%の範囲の濃度の、少なくとも
1つの生物学的に許容されるイオンまたはノニオン界面
活性剤、例えば、長鎖アルキル・トリメチルアンモニウ
ム塩、デオキシコール酸ナトリウム、トリトン(Tri
ton)、トゥイーン(Tween)などで処理される
。同一または異なるタイプの洗剤によるこのような処理
を数回行うことができるが、その後、免疫化学的標識を
洗浄して、過剰量の洗剤を除去する。
【0063】次いで、得られた免疫化学的標識を水性媒
質中に懸濁させることができる。このような免疫化学的
標識の水性懸濁液は、本発明または他の構造を有する免
疫学的検査装置の作成に特に有用である。好ましくは、
水性懸濁液は、標識化免疫学的リガンドまたは分子結合
リガンドが安定であるpKa、例えば約6〜約9の範囲
内、好ましくは約6.5〜約8.5の範囲内のpKaを
提供するために、少なくとも1つの緩衝液を含んでいる
。
質中に懸濁させることができる。このような免疫化学的
標識の水性懸濁液は、本発明または他の構造を有する免
疫学的検査装置の作成に特に有用である。好ましくは、
水性懸濁液は、標識化免疫学的リガンドまたは分子結合
リガンドが安定であるpKa、例えば約6〜約9の範囲
内、好ましくは約6.5〜約8.5の範囲内のpKaを
提供するために、少なくとも1つの緩衝液を含んでいる
。
【0064】以下に実施例を挙げて、本発明の特徴を詳
細に説明するが、本発明の範囲を限定するものではない
。
細に説明するが、本発明の範囲を限定するものではない
。
【0065】感度測定
感度は、以下の実施例において、25mIU/ml
、50mIU/ml、75mIU/mlおよび100m
IU/mlの濃度のヒト絨毛性ゴナドトロピンの標準的
な溶液を製造することによって決定される。該標準的試
料(0.15〜0.20ml)を検査装置に入れ、与え
られたヒト絨毛性ゴナドトロピンの濃度を検出すること
ができる該装置の能力によって感度を決定する。
、50mIU/ml、75mIU/mlおよび100m
IU/mlの濃度のヒト絨毛性ゴナドトロピンの標準的
な溶液を製造することによって決定される。該標準的試
料(0.15〜0.20ml)を検査装置に入れ、与え
られたヒト絨毛性ゴナドトロピンの濃度を検出すること
ができる該装置の能力によって感度を決定する。
【0066】
【実施例】実施例1
A.標識の調製
蒸留水750mlに金ゾル粒子を溶解し、次いで沸騰さ
せた。金酸(hydroauricacid)(70〜
75mg)を添加し、5分間沸騰させ続けた。該金溶液
に、蒸留水10mlに溶解したクエン酸ナトリウム(8
0mg)を注ぎ、該溶液をさらに5分間沸騰させた。該
溶液を室温に冷却した後、このpHを、ヒト絨毛性ゴナ
ドトロピンホルモンに対して作られたモノクローナル抗
体の等電点(ゲル電気泳動を用いて測定した)付近の範
囲に調節した。この溶液に該モノクローナル抗体20m
gを添加し、室温で2時間撹拌した。ウシ血清アルブミ
ン750mgを添加し、該溶液を室温で約12時間撹拌
し続けた。GSAローター中、10,000RPMで2
0分間遠心分離し、上澄み液を廃棄し、得られたペレッ
トをリン酸緩衝溶液(pH7.4)中1%ウシ血清アル
ブミン30mlに懸濁することによってコロイド状金−
モノクローナル抗体コンジュゲート体を回収した。次い
で、該懸濁液を、ソーバル(Sorvall)SS−3
4 ローター中、16,000RPMで15分間回転し
た。再度、上澄み液を廃棄し、ペレットを1%ウシ血清
アルブミン15mlに懸濁した。短時間の音波処理の後
、懸濁液を0.2μmフィルターを介して濾過した。
せた。金酸(hydroauricacid)(70〜
75mg)を添加し、5分間沸騰させ続けた。該金溶液
に、蒸留水10mlに溶解したクエン酸ナトリウム(8
0mg)を注ぎ、該溶液をさらに5分間沸騰させた。該
溶液を室温に冷却した後、このpHを、ヒト絨毛性ゴナ
ドトロピンホルモンに対して作られたモノクローナル抗
体の等電点(ゲル電気泳動を用いて測定した)付近の範
囲に調節した。この溶液に該モノクローナル抗体20m
gを添加し、室温で2時間撹拌した。ウシ血清アルブミ
ン750mgを添加し、該溶液を室温で約12時間撹拌
し続けた。GSAローター中、10,000RPMで2
0分間遠心分離し、上澄み液を廃棄し、得られたペレッ
トをリン酸緩衝溶液(pH7.4)中1%ウシ血清アル
ブミン30mlに懸濁することによってコロイド状金−
モノクローナル抗体コンジュゲート体を回収した。次い
で、該懸濁液を、ソーバル(Sorvall)SS−3
4 ローター中、16,000RPMで15分間回転し
た。再度、上澄み液を廃棄し、ペレットを1%ウシ血清
アルブミン15mlに懸濁した。短時間の音波処理の後
、懸濁液を0.2μmフィルターを介して濾過した。
【0067】B.装置の製造
予め活性化した孔径5μmのナイロン膜[ポール・イム
ノダイン(Pall Immu−nodyne)]の
試料を180mm×25mmの大きさに切断し、芯膜と
して薄いプラスチック製プレート(100mm×180
mm)の底部に付けた。カマグ・リノマット(Cama
g Linomat)IVを用いて底部から約1.5
cmの線形に0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7
.6)および5%スクロースに3mg/mlのヒツジ抗
ヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)抗体を溶解した溶
液36μlをスプレイすることによって、該膜上に固定
化抗体の検査指標域を規定した。スプレイの後、膜を3
7℃で30分間乾燥させ、次いで、0.1Mリン酸緩衝
液に2%無脂肪粉ミルク[カーネーション(Carna
tion)]および2%スクロースを溶解した溶液で処
理した。次いで、該膜を0.1リン酸ナトリウム中2%
スクロースで洗浄し、さらに乾燥するために室温で約1
2時間放置した。次の工程まで、基板および吸上膜をデ
シケーター中に貯蔵することができる。
ノダイン(Pall Immu−nodyne)]の
試料を180mm×25mmの大きさに切断し、芯膜と
して薄いプラスチック製プレート(100mm×180
mm)の底部に付けた。カマグ・リノマット(Cama
g Linomat)IVを用いて底部から約1.5
cmの線形に0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7
.6)および5%スクロースに3mg/mlのヒツジ抗
ヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)抗体を溶解した溶
液36μlをスプレイすることによって、該膜上に固定
化抗体の検査指標域を規定した。スプレイの後、膜を3
7℃で30分間乾燥させ、次いで、0.1Mリン酸緩衝
液に2%無脂肪粉ミルク[カーネーション(Carna
tion)]および2%スクロースを溶解した溶液で処
理した。次いで、該膜を0.1リン酸ナトリウム中2%
スクロースで洗浄し、さらに乾燥するために室温で約1
2時間放置した。次の工程まで、基板および吸上膜をデ
シケーター中に貯蔵することができる。
【0068】2つのセルロース膜[ワットマン(Wha
tman)ET31]を、0.1Mリン酸ナトリウム緩
衝液(pH7.4)、0.1%ウシ血清アルブミン、0
.5%無脂肪粉ミルク、2%スクロース、および0.0
5%アジ化ナトリウムの溶液で予め処理し、室温で30
分間インキュベートした。
tman)ET31]を、0.1Mリン酸ナトリウム緩
衝液(pH7.4)、0.1%ウシ血清アルブミン、0
.5%無脂肪粉ミルク、2%スクロース、および0.0
5%アジ化ナトリウムの溶液で予め処理し、室温で30
分間インキュベートした。
【0069】予め処理した2つのセルロース膜を、室温
で1時間、減圧デシケーター中で乾燥することによって
、第2フィルター素子および貯蔵パッドを調製した。
で1時間、減圧デシケーター中で乾燥することによって
、第2フィルター素子および貯蔵パッドを調製した。
【0070】0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7
.6)および5%スクロースにコロイド状金−モノクロ
ーナル抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体コンジュゲート
体を溶解した溶液中、室温で30分間、5mm×180
mmの長方形のセルロース膜片[シュライヒャー・アン
ド・シュール(Schleicher & Sch
uell)]をインキュベートすることによって、第1
フィルター素子を調製した。次いで、該膜をガラスプレ
ート上に置き、凍結乾燥器中、一定の減圧下、36℃で
加熱乾燥し、使用するまでデシケーター中で貯蔵乾燥し
た。
.6)および5%スクロースにコロイド状金−モノクロ
ーナル抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体コンジュゲート
体を溶解した溶液中、室温で30分間、5mm×180
mmの長方形のセルロース膜片[シュライヒャー・アン
ド・シュール(Schleicher & Sch
uell)]をインキュベートすることによって、第1
フィルター素子を調製した。次いで、該膜をガラスプレ
ート上に置き、凍結乾燥器中、一定の減圧下、36℃で
加熱乾燥し、使用するまでデシケーター中で貯蔵乾燥し
た。
【0071】第2フィルター素子に接して第1フィルタ
ー素子を付け、吸上膜に接してプラスチック製基板に第
2フィルター素子を付けた。最後に、第1フィルター素
子に接して貯蔵パッドを付けた。次いで、該プラスチッ
ク製プレートを、各々、貯蔵パッド、第1フィルター素
子、第2フィルター素子および吸上膜の線形配列を含む
ように、長さ100mmおよび幅7.5mmの複数の小
片に切断した。
ー素子を付け、吸上膜に接してプラスチック製基板に第
2フィルター素子を付けた。最後に、第1フィルター素
子に接して貯蔵パッドを付けた。次いで、該プラスチッ
ク製プレートを、各々、貯蔵パッド、第1フィルター素
子、第2フィルター素子および吸上膜の線形配列を含む
ように、長さ100mmおよび幅7.5mmの複数の小
片に切断した。
【0072】実施例2
吸上膜のために用いた物質が孔径12μmを有するセル
ロース膜(シュライヒャー・アンド・シュール)である
以外は、実施例1Bと同じ方法を行った。抗体で線形に
スプレイした後、膜をデシケーター中に24時間放置し
て、抗体−膜結合を確実に最大にした。次いで、膜を、
pH8.5〜9.0の範囲の0.1Mホウ酸緩衝液中1
%ウシ血清アルブミン、0.5%無脂肪粉ミルク、5%
トレハロース、0.05%トゥイーン 20、および0
.05%アジ化ナトリウムを含むブロッキング緩衝液中
でインキュベートした。ブロックされた膜を減圧デシケ
ーター中で再度1時間乾燥し、検査装置に入れるまで、
通常のデシケーター中に貯蔵した。
ロース膜(シュライヒャー・アンド・シュール)である
以外は、実施例1Bと同じ方法を行った。抗体で線形に
スプレイした後、膜をデシケーター中に24時間放置し
て、抗体−膜結合を確実に最大にした。次いで、膜を、
pH8.5〜9.0の範囲の0.1Mホウ酸緩衝液中1
%ウシ血清アルブミン、0.5%無脂肪粉ミルク、5%
トレハロース、0.05%トゥイーン 20、および0
.05%アジ化ナトリウムを含むブロッキング緩衝液中
でインキュベートした。ブロックされた膜を減圧デシケ
ーター中で再度1時間乾燥し、検査装置に入れるまで、
通常のデシケーター中に貯蔵した。
【0073】実施例3
実施例1Bの方法にしたがって小片を調製した。
【0074】貯蔵パッドに尿の流れを与えると、約3分
後に、検査指標域に検出可能な信号が現れ始めた。検査
感度は約50mIU/mlであった。
後に、検査指標域に検出可能な信号が現れ始めた。検査
感度は約50mIU/mlであった。
【0075】実施例4
第1フィルター素子および貯蔵パッドを省略した以外は
実施例1Bの方法に従って小片を製造した。実施例1に
従って調製したコロイド状金−モノクローナル抗ヒト絨
毛性ゴナドトロピン抗体コンジュゲート体10μlを含
む雌性の尿100μlを入れた管の中に、該小片を差し
込んだ。液体が小片に沿って移動すると、約2分で、検
査指標域中に検出可能な信号が現れ、液体が小片の端部
に達するまでの時間(約4分)に強くなっていった。存
在するヒト絨毛性ゴナドトロピンに対するこの検査方法
の感度は、25mIU/mlであった。
実施例1Bの方法に従って小片を製造した。実施例1に
従って調製したコロイド状金−モノクローナル抗ヒト絨
毛性ゴナドトロピン抗体コンジュゲート体10μlを含
む雌性の尿100μlを入れた管の中に、該小片を差し
込んだ。液体が小片に沿って移動すると、約2分で、検
査指標域中に検出可能な信号が現れ、液体が小片の端部
に達するまでの時間(約4分)に強くなっていった。存
在するヒト絨毛性ゴナドトロピンに対するこの検査方法
の感度は、25mIU/mlであった。
【0076】実施例5
以下のとおり、標識した抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗
体で第1フィルター素子を処理した以外は、実施例1B
の方法に実質的に従って、試験小片を調製した。市販の
入手可能な、粒径0.1〜0.3μmの範囲の着色され
たポリスチレンラテックス粒子の10%懸濁液(0.1
ml)を、マイクロヒュージ(microfuge)遠
心分離によって、蒸留水で3回洗浄した。最終ペレット
を、ウシ血清アルブミン1mgを含有する0.1Mグリ
シン・塩酸塩緩衝液2mlに懸濁した。ロッカー(ro
cker)上で、室温で約12時間のインキュベーショ
ンの後、該ラテックス懸濁液を0.1Mリン酸ナトリウ
ム緩衝液(pH6.8)で3回洗浄して、過剰量のウシ
血清アルブミンを除去した。得られた懸濁液を同一のリ
ン酸緩衝液で2mlにし、25%グルタルアルデヒドを
添加して、最終濃度を1%にした。この試料を室温で3
時間インキュベートし、同一の緩衝液でさらに3回洗浄
した。ラテックス懸濁液2mlに、抗ヒト絨毛性ゴナド
トロピン抗体100マイクログラムを添加し、室温でさ
らに3時間インキュベートした。次いで、グリシンを添
加して、最終濃度を2%にした。さらに1時間インキュ
ベートした後、ラテックス懸濁液を同一の緩衝液で3回
洗浄し、2%ウシ血清アルブミンを含有する同一の緩衝
液中に懸濁した。該懸濁液を短時間音波処理し、次いで
、使用するまで4℃で貯蔵した。
体で第1フィルター素子を処理した以外は、実施例1B
の方法に実質的に従って、試験小片を調製した。市販の
入手可能な、粒径0.1〜0.3μmの範囲の着色され
たポリスチレンラテックス粒子の10%懸濁液(0.1
ml)を、マイクロヒュージ(microfuge)遠
心分離によって、蒸留水で3回洗浄した。最終ペレット
を、ウシ血清アルブミン1mgを含有する0.1Mグリ
シン・塩酸塩緩衝液2mlに懸濁した。ロッカー(ro
cker)上で、室温で約12時間のインキュベーショ
ンの後、該ラテックス懸濁液を0.1Mリン酸ナトリウ
ム緩衝液(pH6.8)で3回洗浄して、過剰量のウシ
血清アルブミンを除去した。得られた懸濁液を同一のリ
ン酸緩衝液で2mlにし、25%グルタルアルデヒドを
添加して、最終濃度を1%にした。この試料を室温で3
時間インキュベートし、同一の緩衝液でさらに3回洗浄
した。ラテックス懸濁液2mlに、抗ヒト絨毛性ゴナド
トロピン抗体100マイクログラムを添加し、室温でさ
らに3時間インキュベートした。次いで、グリシンを添
加して、最終濃度を2%にした。さらに1時間インキュ
ベートした後、ラテックス懸濁液を同一の緩衝液で3回
洗浄し、2%ウシ血清アルブミンを含有する同一の緩衝
液中に懸濁した。該懸濁液を短時間音波処理し、次いで
、使用するまで4℃で貯蔵した。
【0077】実施例6
第1フィルター素子および貯蔵パッドを省略した以外、
実施例1Bの方法に従って、小片を調製した。次いで、
該試験小片を、雌性の尿100μlに入れた実施例5の
方法に従って標識した抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体
5μlを含有する試験管に差し込んだ。液体が小片に沿
って移動すると、約2分で、検査指標域に検出可能な信
号が現れ、この信号は、液体が小片の端部に達する時間
(約4分)まで強くなっていった。このヒト絨毛性ゴナ
ドトロピンに対する該検査法の感度は、25mIU/m
lであった。
実施例1Bの方法に従って、小片を調製した。次いで、
該試験小片を、雌性の尿100μlに入れた実施例5の
方法に従って標識した抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体
5μlを含有する試験管に差し込んだ。液体が小片に沿
って移動すると、約2分で、検査指標域に検出可能な信
号が現れ、この信号は、液体が小片の端部に達する時間
(約4分)まで強くなっていった。このヒト絨毛性ゴナ
ドトロピンに対する該検査法の感度は、25mIU/m
lであった。
【0078】実施例7
40mM塩化ナトリウムおよび2%デキストラン9,4
00を含有する20mMトリス−塩酸塩緩衝液(pH6
.8)2ml中で、バルカンXC72炭素粒子10mg
をホモジナイズした。室温で2時間のインキュベーショ
ンの後、該溶液に、トリス−塩酸塩緩衝液1mlにフル
オレセインイソチオシアナート5mgを溶解した溶液を
添加した。該混合物を短時間音波処理し、室温で約12
時間インキュベートした。インキュベーションの後、該
炭素溶液に0.1M塩化ナトリウム中0.1Mリン酸ナ
トリウム緩衝液(pH7.6)の20mlを添加し、次
いで、4℃、15,000RPMで遠心分離した。この
工程を3回繰り返し、得られたペレットをリン酸緩衝液
20ml中に懸濁した。 短時間の音波処理の後、該懸濁液に、ヒト絨毛性ゴナド
トロピンに対して作られたモノクローナル抗体3mgを
添加し、該混合物を室温で6時間インキュベートした。 次いで、該混合物を15,000RPMで3回遠心分離
して、未反応の抗体を除去した。最終ペレットを、1%
ウシ血清アルブミン、5%スクロース、0.1M塩化ナ
トリウム、および0.05%アジ化ナトリウムを含有す
る0.1Mヘペス(Hepes)緩衝液(pH7.5)
20ml中に懸濁した。最終濃度が0.025%に達す
るまで、セチルトリメチルアンモニウム臭化物を添加し
た。次いで、これを30分間インキュベートし、15,
000RPMで遠心分離した。得られたペレットを、1
%ウシ血清アルブミン、5%スクロース、0.1M塩化
ナトリウム、および0.05%アジ化ナトリウムを含有
する0.1Mヘペス緩衝液(pH7.5)20ml中に
懸濁させ、短時間音波処理し、デオキシ酸ナトリウムで
希釈して、最終濃度を0.1%にし、その後、室温で3
0分間インキュベートし、再度遠心分離した。該ペレッ
トを再度、1%ウシ血清アルブミン、5%スクロース、
0.1M塩化ナトリウム、および0.05%アジ化ナト
リウムを含有する0.1Mヘペス緩衝液(pH7.5)
20ml中で懸濁し、短時間音波処理した。
00を含有する20mMトリス−塩酸塩緩衝液(pH6
.8)2ml中で、バルカンXC72炭素粒子10mg
をホモジナイズした。室温で2時間のインキュベーショ
ンの後、該溶液に、トリス−塩酸塩緩衝液1mlにフル
オレセインイソチオシアナート5mgを溶解した溶液を
添加した。該混合物を短時間音波処理し、室温で約12
時間インキュベートした。インキュベーションの後、該
炭素溶液に0.1M塩化ナトリウム中0.1Mリン酸ナ
トリウム緩衝液(pH7.6)の20mlを添加し、次
いで、4℃、15,000RPMで遠心分離した。この
工程を3回繰り返し、得られたペレットをリン酸緩衝液
20ml中に懸濁した。 短時間の音波処理の後、該懸濁液に、ヒト絨毛性ゴナド
トロピンに対して作られたモノクローナル抗体3mgを
添加し、該混合物を室温で6時間インキュベートした。 次いで、該混合物を15,000RPMで3回遠心分離
して、未反応の抗体を除去した。最終ペレットを、1%
ウシ血清アルブミン、5%スクロース、0.1M塩化ナ
トリウム、および0.05%アジ化ナトリウムを含有す
る0.1Mヘペス(Hepes)緩衝液(pH7.5)
20ml中に懸濁した。最終濃度が0.025%に達す
るまで、セチルトリメチルアンモニウム臭化物を添加し
た。次いで、これを30分間インキュベートし、15,
000RPMで遠心分離した。得られたペレットを、1
%ウシ血清アルブミン、5%スクロース、0.1M塩化
ナトリウム、および0.05%アジ化ナトリウムを含有
する0.1Mヘペス緩衝液(pH7.5)20ml中に
懸濁させ、短時間音波処理し、デオキシ酸ナトリウムで
希釈して、最終濃度を0.1%にし、その後、室温で3
0分間インキュベートし、再度遠心分離した。該ペレッ
トを再度、1%ウシ血清アルブミン、5%スクロース、
0.1M塩化ナトリウム、および0.05%アジ化ナト
リウムを含有する0.1Mヘペス緩衝液(pH7.5)
20ml中で懸濁し、短時間音波処理した。
【0079】貯蔵パッドを省略した以外は実施例1Bに
従って調製した試験小片の第1フィルター素子上に、コ
ロイド状金の代わりに、この炭素ゾルを導入した。この
試験小片を減圧乾燥器中で約1時間乾燥し、使用するま
で、室温でデシケーター中に貯蔵した。
従って調製した試験小片の第1フィルター素子上に、コ
ロイド状金の代わりに、この炭素ゾルを導入した。この
試験小片を減圧乾燥器中で約1時間乾燥し、使用するま
で、室温でデシケーター中に貯蔵した。
【0080】ヒト絨毛性ゴナドトロピンまたは黄体化ホ
ルモン検査を行うために、尿試料100μlを培養管に
入れ、次いで、この管の中に小片を差し込んだ。尿試料
と接触すると、炭素粒子−抗体コンジュゲート体がすぐ
に溶解し、吸上膜に向かって移動した。陽性試験は、指
標において濃縮されたカーボンブラック粒子の非常に濃
い色と一致した。検出限界は、ヒト絨毛性ゴナドトロピ
ンおよび黄体化ホルモンの両検査において、約25mI
U/mlであった。
ルモン検査を行うために、尿試料100μlを培養管に
入れ、次いで、この管の中に小片を差し込んだ。尿試料
と接触すると、炭素粒子−抗体コンジュゲート体がすぐ
に溶解し、吸上膜に向かって移動した。陽性試験は、指
標において濃縮されたカーボンブラック粒子の非常に濃
い色と一致した。検出限界は、ヒト絨毛性ゴナドトロピ
ンおよび黄体化ホルモンの両検査において、約25mI
U/mlであった。
【0081】実施例8
第1フィルター素子および貯蔵パッドを省略した以外は
、実施例1Bの方法に従って、小片を調製した。次いで
、該試験小片を、完全に混合した炭素ゾル標識化抗体(
5μl)およびヒト絨毛性ゴナドトロピン含有尿試料(
100μl)を含有する試験管中に差し込んだ。約1分
後、検出可能な信号が現れ始めた。この検査の感度は約
25mIU/mlと測定された。
、実施例1Bの方法に従って、小片を調製した。次いで
、該試験小片を、完全に混合した炭素ゾル標識化抗体(
5μl)およびヒト絨毛性ゴナドトロピン含有尿試料(
100μl)を含有する試験管中に差し込んだ。約1分
後、検出可能な信号が現れ始めた。この検査の感度は約
25mIU/mlと測定された。
【0082】実施例9
ヒト絨毛性ゴナドトロピンまたは黄体ホルモンに対する
モノクローナル抗体でコーティングした炭素ゾル試薬(
管当たり5μl)を凍結乾燥した。該管は、使用するま
で、室温でデシケーター中に貯蔵することができる。
モノクローナル抗体でコーティングした炭素ゾル試薬(
管当たり5μl)を凍結乾燥した。該管は、使用するま
で、室温でデシケーター中に貯蔵することができる。
【0083】ヒト絨毛性ゴナドトロピンまたは黄体化ホ
ルモンを導入するために、尿試料100μlを、乾燥ま
たは凍結乾燥した炭素ゾルを含有している培養管中に散
布した。炭素試薬は、尿試料との接触によってすぐに溶
液になった。第1フィルター素子および貯蔵パッドを有
していない以外は実施例1Bに従って試験小片を製造し
、これに指標としてヒツジ抗−全ヒト絨毛性ゴナドトロ
ピン抗体(小片当たり3μg)のラインをスプレイし、
次いで管の中に差し込んだ。移動する試料混合物が指標
に達すると、尿試料がヒト絨毛性ゴナドトロピンまたは
黄体化ホルモンを含有している場合は、黒いバンドが現
れ始める。乾燥または凍結乾燥した炭素試薬を用いる検
査の感度は、両方の場合、約25mIU/mlであった
。 乾燥または凍結乾燥した炭素試薬は活性のままであり、
室温で1年にわたって貯蔵した後、同じ感度を示す。
ルモンを導入するために、尿試料100μlを、乾燥ま
たは凍結乾燥した炭素ゾルを含有している培養管中に散
布した。炭素試薬は、尿試料との接触によってすぐに溶
液になった。第1フィルター素子および貯蔵パッドを有
していない以外は実施例1Bに従って試験小片を製造し
、これに指標としてヒツジ抗−全ヒト絨毛性ゴナドトロ
ピン抗体(小片当たり3μg)のラインをスプレイし、
次いで管の中に差し込んだ。移動する試料混合物が指標
に達すると、尿試料がヒト絨毛性ゴナドトロピンまたは
黄体化ホルモンを含有している場合は、黒いバンドが現
れ始める。乾燥または凍結乾燥した炭素試薬を用いる検
査の感度は、両方の場合、約25mIU/mlであった
。 乾燥または凍結乾燥した炭素試薬は活性のままであり、
室温で1年にわたって貯蔵した後、同じ感度を示す。
【0084】実施例10
第1フィルター素子および貯蔵パッドを削除した以外は
、実施例1Bに従って、吸上膜上の線形スプレイとして
1mg/mlの抗チロキシン抗体を用いて、検査装置を
作成した。
、実施例1Bに従って、吸上膜上の線形スプレイとして
1mg/mlの抗チロキシン抗体を用いて、検査装置を
作成した。
【0085】チロキシンに結合した炭素ゾル(実施例2
1参照)5μと血清100μlの混合物中への挿入によ
って(競合検査)、約2分で、対照バンドが現れ始めた
。約60ng/mlよりも高い血清試料中のチロキシン
(未標識化)のレベルでは、バンドの形成が生じなかっ
た(59ng/mlでかすかなバンドが現れた)。これ
に対して、血清試料中、チロキシンの非存在下で対照バ
ンドと同じ強さのバンドを生じるためには、10ng/
ml以下のチロキシンが必要である。
1参照)5μと血清100μlの混合物中への挿入によ
って(競合検査)、約2分で、対照バンドが現れ始めた
。約60ng/mlよりも高い血清試料中のチロキシン
(未標識化)のレベルでは、バンドの形成が生じなかっ
た(59ng/mlでかすかなバンドが現れた)。これ
に対して、血清試料中、チロキシンの非存在下で対照バ
ンドと同じ強さのバンドを生じるためには、10ng/
ml以下のチロキシンが必要である。
【0086】実施例11
第1フィルター素子および貯蔵パッドを削除し、吸上膜
上での線形スプレイとして市販の入手可能な2mg/m
lのライムズ(Lymes)抗原[OEMコンセプツ(
OEM Concepts)]を用いて、実施例1B
に従って検査装置を作成した。
上での線形スプレイとして市販の入手可能な2mg/m
lのライムズ(Lymes)抗原[OEMコンセプツ(
OEM Concepts)]を用いて、実施例1B
に従って検査装置を作成した。
【0087】装置の貯蔵端部を、ヒト血清100μlと
、フルオレセインイソチオシアナート−コンジュゲート
ヤギ抗ヒトイムノグロブリンGで標識した炭素粒子(実
施例21参照)5μlの混合液中に浸漬すると、試料が
血清陽性である場合は、約4分で検出可能な信号が現れ
る。
、フルオレセインイソチオシアナート−コンジュゲート
ヤギ抗ヒトイムノグロブリンGで標識した炭素粒子(実
施例21参照)5μlの混合液中に浸漬すると、試料が
血清陽性である場合は、約4分で検出可能な信号が現れ
る。
【0088】実施例12
実施例11に従って検査装置を作成した。ヒト血清10
μlを第2フィルター素子上にスポットした。該装置を
、20mM四酢酸エチレンジアミンにフルオレセインイ
ソチオシアナート−コンジュゲートヤギ抗ヒトイムノグ
ロブリンGで標識した炭素粒子(5μl)を入れた懸濁
液100μlを含有する管の中に差し込んだ。試料が血
清陽性である場合は、5分で検出可能な信号が現れる。
μlを第2フィルター素子上にスポットした。該装置を
、20mM四酢酸エチレンジアミンにフルオレセインイ
ソチオシアナート−コンジュゲートヤギ抗ヒトイムノグ
ロブリンGで標識した炭素粒子(5μl)を入れた懸濁
液100μlを含有する管の中に差し込んだ。試料が血
清陽性である場合は、5分で検出可能な信号が現れる。
【0089】実施例13
2mg/mlの風疹抗原[ビラル・アンチゲンズ・イン
コーポレイテッド(ViralAntigens,In
c.)]を芯膜上に線形スプレイした以外は、実施例1
1に従って検査装置を作成した。
コーポレイテッド(ViralAntigens,In
c.)]を芯膜上に線形スプレイした以外は、実施例1
1に従って検査装置を作成した。
【0090】貯蔵パッドが、ヒト血清100μl、およ
びフルオレセインイソチオシアナートコンジュゲートヤ
ギ抗ヒトイムノグロブリンGで標識した炭素粒子(実施
例21参照)5μlと接触すると、試料が血清陽性であ
る場合は、約2分で検出可能な信号が現れる。
びフルオレセインイソチオシアナートコンジュゲートヤ
ギ抗ヒトイムノグロブリンGで標識した炭素粒子(実施
例21参照)5μlと接触すると、試料が血清陽性であ
る場合は、約2分で検出可能な信号が現れる。
【0091】実施例14
実施例13に従って検査装置を作成した。次に、血清1
0μlを第2フィルター素子上にスポットし、該装置を
、20mM四酢酸エチレンジアミンにフルオレセインイ
ソチオシアナートコンジュゲートヤギ抗ヒトイムノグロ
ブリンGで標識した炭素粒子(実施例21参照)を入れ
た懸濁液100μlを含んでいる管に差し込んだ。
0μlを第2フィルター素子上にスポットし、該装置を
、20mM四酢酸エチレンジアミンにフルオレセインイ
ソチオシアナートコンジュゲートヤギ抗ヒトイムノグロ
ブリンGで標識した炭素粒子(実施例21参照)を入れ
た懸濁液100μlを含んでいる管に差し込んだ。
【0092】試料が血清陽性である場合は、約3分で検
出可能な信号が現れる。
出可能な信号が現れる。
【0093】実施例15
実施例11に従って検査装置を作成し、ライム抗原のラ
インと平行に該ラインから約7mm離れて、風疹抗原を
線形スプレイした。
インと平行に該ラインから約7mm離れて、風疹抗原を
線形スプレイした。
【0094】風疹血清陽性試料(10μl)を第2フィ
ルター素子上にスポットした。該装置を、20mM四酢
酸エチレンジアミンにフルオレセインイソチオシアナー
トコンジュゲートヤギ抗ヒトイムノグロブリンGで標識
した炭素粒子(実施例21参照)(10μl)を入れた
懸濁液100μlを含んでいる管中に差し込んだ。
ルター素子上にスポットした。該装置を、20mM四酢
酸エチレンジアミンにフルオレセインイソチオシアナー
トコンジュゲートヤギ抗ヒトイムノグロブリンGで標識
した炭素粒子(実施例21参照)(10μl)を入れた
懸濁液100μlを含んでいる管中に差し込んだ。
【0095】風疹抗原のラインに沿って、約5分で検出
可能な信号が現れた。
可能な信号が現れた。
【0096】実施例16
風疹およびライム血清陽性試料(20μl)を膜上にス
ポットした以外は実施例15の方法に従った。約5分で
2つの検出可能な信号が現れた。
ポットした以外は実施例15の方法に従った。約5分で
2つの検出可能な信号が現れた。
【0097】実施例17
炭素ゾル調製用の種々の炭素材料および同調製用の緩衝
液の安定性は、以下の方法で容易に測定することができ
る。
液の安定性は、以下の方法で容易に測定することができ
る。
【0098】A.種々のカーボンブラック[モナルク1
,000、モナルク880、モナルク120、リーガル
250R、リーガル500R、バルカンXC72Rおよ
びバルカンXC72;全て、カボット(Cabot)か
ら入手]5mgと2%ポリエチレングリコール(6,0
00〜8,000)100μlの混合物を5分間研磨し
、ヒト絨毛性ゴナドトロピンに対して作られたモノクロ
ーナル抗体2mgを含有しているリン酸食塩緩衝液で1
0mlに希釈した。 該モノクローナル抗体溶液に炭素粒子を分散させるため
に短時間音波処理をした後、撹拌しながら、混合物を室
温で6時間インキュベートした。インキュベーションの
後に、試料を遠心分離によって3回洗浄し、過剰量の抗
体を除去した。各遠心分離は、リン酸緩衝溶液10ml
を用いて15,000RPMで20分間行った。最終ペ
レットを3%リン酸緩衝溶液10mlに懸濁し、短時間
音波処理して、炭素粒子を完全に分散した。
,000、モナルク880、モナルク120、リーガル
250R、リーガル500R、バルカンXC72Rおよ
びバルカンXC72;全て、カボット(Cabot)か
ら入手]5mgと2%ポリエチレングリコール(6,0
00〜8,000)100μlの混合物を5分間研磨し
、ヒト絨毛性ゴナドトロピンに対して作られたモノクロ
ーナル抗体2mgを含有しているリン酸食塩緩衝液で1
0mlに希釈した。 該モノクローナル抗体溶液に炭素粒子を分散させるため
に短時間音波処理をした後、撹拌しながら、混合物を室
温で6時間インキュベートした。インキュベーションの
後に、試料を遠心分離によって3回洗浄し、過剰量の抗
体を除去した。各遠心分離は、リン酸緩衝溶液10ml
を用いて15,000RPMで20分間行った。最終ペ
レットを3%リン酸緩衝溶液10mlに懸濁し、短時間
音波処理して、炭素粒子を完全に分散した。
【0099】ヒト絨毛性ゴナドトロピン検査に関して、
炭素ゾル20μlおよび尿試料200μlを分散し、培
養管(10×75mm)中でよく混合した。次いで、該
混合物を、ヒツジ抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体で線
形スプレイし、リン酸緩衝溶液(pH7.4)中1%ウ
シ血清アルブミンでブロックした、幅5mmおよび高さ
100mmの大きさのワットマン(Whatman)ペ
ーパー(31ET)の小片に移動させた。
炭素ゾル20μlおよび尿試料200μlを分散し、培
養管(10×75mm)中でよく混合した。次いで、該
混合物を、ヒツジ抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体で線
形スプレイし、リン酸緩衝溶液(pH7.4)中1%ウ
シ血清アルブミンでブロックした、幅5mmおよび高さ
100mmの大きさのワットマン(Whatman)ペ
ーパー(31ET)の小片に移動させた。
【0100】バルカンXC72は、200mIU/ml
ヒト絨毛性ゴナドトロピンで最良の信号対ノイズの割合
を得ると思われる。バルカンXC72Rについて同様な
結果が得られるが、陽性の信号がわずかに低い。
ヒト絨毛性ゴナドトロピンで最良の信号対ノイズの割合
を得ると思われる。バルカンXC72Rについて同様な
結果が得られるが、陽性の信号がわずかに低い。
【0101】B.ホモジナイゼーションによって、同一
のカーボンブラック5mgを、塩化ナトリウム40mm
および2%(w/v)デキストラン9,400を含有す
る20mMトリス−HCl緩衝液(pH6.8)2ml
に懸濁した。室温で2時間インキュベートした後、この
ホモジナイズした炭素懸濁液に3%ウシ血清アルブミン
溶液1mlを添加した。該混合物を短時間音波処理し、
室温でさらに約12時間インキュベートした。インキュ
ベーションの後、該混合物5μlを蒸留水1mlを含ん
でいるキューベット中に分散させた。各試料について、
700nmでの吸光度を測定した。結果を下記表1に示
す。
のカーボンブラック5mgを、塩化ナトリウム40mm
および2%(w/v)デキストラン9,400を含有す
る20mMトリス−HCl緩衝液(pH6.8)2ml
に懸濁した。室温で2時間インキュベートした後、この
ホモジナイズした炭素懸濁液に3%ウシ血清アルブミン
溶液1mlを添加した。該混合物を短時間音波処理し、
室温でさらに約12時間インキュベートした。インキュ
ベーションの後、該混合物5μlを蒸留水1mlを含ん
でいるキューベット中に分散させた。各試料について、
700nmでの吸光度を測定した。結果を下記表1に示
す。
【0102】
【表1】
【0103】C.バルカンXC72カーボンブラックを
種々のpHを有する数種類の緩衝溶液中に懸濁させる。 バルカンXC72炭素粒子5mgを、2%デキストラン
9,400を含有する種々の緩衝溶液2ml中でホモジ
ナイズし、室温で2時間インキュベートした。インキュ
ベーションの後、各ホモジネート物5μlを蒸留水1m
lに添加した。該混合物に、同一の緩衝液中3%ウシ血
清アルブミン1mlを添加し、次いで、音波処理し、室
温で約12時間インキュベートした。インキュベーショ
ンの後に、該混合物5μlを蒸留水1mlに懸濁し、7
00nmでの吸光度を測定した。結果を下記表2に示す
。
種々のpHを有する数種類の緩衝溶液中に懸濁させる。 バルカンXC72炭素粒子5mgを、2%デキストラン
9,400を含有する種々の緩衝溶液2ml中でホモジ
ナイズし、室温で2時間インキュベートした。インキュ
ベーションの後、各ホモジネート物5μlを蒸留水1m
lに添加した。該混合物に、同一の緩衝液中3%ウシ血
清アルブミン1mlを添加し、次いで、音波処理し、室
温で約12時間インキュベートした。インキュベーショ
ンの後に、該混合物5μlを蒸留水1mlに懸濁し、7
00nmでの吸光度を測定した。結果を下記表2に示す
。
【0104】
【表2】
700nmでのOD
イオン化
デキスト ウシ血清 緩 衝
液 濃度 pH
ラン アルブミン リン
酸ナトリウム 0.1M 6.0
0.3335 0.6030 リン酸
ナトリウム 0.1M 6.8
0.5142 0.7462 トリス−
HCl 0.02M 6.8
0.6277 0.8452 リン酸ナト
リウム 0.003M 7.0 0.4
722 0.5389 リン酸ナトリウム
0.1M 7.6 0.43
48 0.6100 トリス−HCl
0.02M 8.0 0.647
9 0.5220 グリシン−HCl
0.1M 8.3 0.4666
0.5197 トリス−クエン酸塩
0.1M 8.6 0.4282
0.4933
700nmでのOD
イオン化
デキスト ウシ血清 緩 衝
液 濃度 pH
ラン アルブミン リン
酸ナトリウム 0.1M 6.0
0.3335 0.6030 リン酸
ナトリウム 0.1M 6.8
0.5142 0.7462 トリス−
HCl 0.02M 6.8
0.6277 0.8452 リン酸ナト
リウム 0.003M 7.0 0.4
722 0.5389 リン酸ナトリウム
0.1M 7.6 0.43
48 0.6100 トリス−HCl
0.02M 8.0 0.647
9 0.5220 グリシン−HCl
0.1M 8.3 0.4666
0.5197 トリス−クエン酸塩
0.1M 8.6 0.4282
0.4933
【0105】上記表2からわかるよう
に、約6.8〜8のpH値を有する緩衝溶液は、炭素粒
子の分散について特に良好である。
に、約6.8〜8のpH値を有する緩衝溶液は、炭素粒
子の分散について特に良好である。
【0106】実施例18
撹拌しながら、0.3Mホウ酸緩衝液(pH9.0)1
mlに抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体1mgを入れた
混合物に、フルオレセインイソチオシアナート50μg
を添加した。1時間撹拌し続け、次いで、混合物をセフ
ァデックス(Sephadex)G−25カラムに通し
て、未反応イソチオシアナートおよび他の不必要な物質
を除去した。抗体:イソチオシアナートの割合は、約1
:3であった。 カーボンブラック(バルカン72)1mgの水性懸濁液
に抗体結合体0.5mgを添加した。混合物を音波処理
し、室温で12時間インキュベートし、3回遠心分離し
た。最終ペレツトを、実施例12に記載のような緩衝液
に懸濁し、使用するまで4℃で貯蔵した。
mlに抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体1mgを入れた
混合物に、フルオレセインイソチオシアナート50μg
を添加した。1時間撹拌し続け、次いで、混合物をセフ
ァデックス(Sephadex)G−25カラムに通し
て、未反応イソチオシアナートおよび他の不必要な物質
を除去した。抗体:イソチオシアナートの割合は、約1
:3であった。 カーボンブラック(バルカン72)1mgの水性懸濁液
に抗体結合体0.5mgを添加した。混合物を音波処理
し、室温で12時間インキュベートし、3回遠心分離し
た。最終ペレツトを、実施例12に記載のような緩衝液
に懸濁し、使用するまで4℃で貯蔵した。
【0107】抗黄体化ホルモン、ヤギ抗ヒトイムノグロ
ブリンG、およびイムノグロブリンM抗体を用いて、同
様の生成物を得ることができる。
ブリンG、およびイムノグロブリンM抗体を用いて、同
様の生成物を得ることができる。
【0108】実施例19
カーボンブラック(バルカン72)5mgの水性懸濁液
10mlにヤギ抗マウス抗血清200μlを添加した。 該混合物を音波処理し、室温で約12時間インキュベー
トした。次いで、抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体1m
gを添加し、この混合物を室温で2時間インキュベート
し、3回遠心分離した。最終ペレツトを、実施例12に
記載のような緩衝液に懸濁し、使用するまで4℃で貯蔵
した。
10mlにヤギ抗マウス抗血清200μlを添加した。 該混合物を音波処理し、室温で約12時間インキュベー
トした。次いで、抗ヒト絨毛性ゴナドトロピン抗体1m
gを添加し、この混合物を室温で2時間インキュベート
し、3回遠心分離した。最終ペレツトを、実施例12に
記載のような緩衝液に懸濁し、使用するまで4℃で貯蔵
した。
【0109】実施例20
リン酸緩衝溶液(PBS)10mlにカーボンブラック
5mgを入れた懸濁液にアビジン2mgを添加した。室
温で2時間インキュベートした後、PBS中3%ウシ血
清アルブミン5mlを添加した。2時間放置した後、P
BS中1%ウシ血清アルブミンに入れたビオチン化抗ヒ
ト絨毛性ゴナドトロピン0.5mgを添加した。さらに
1時間インキュベートした後、混合物を3回遠心分離し
た。最終ペレットを、実施例12に記載のような緩衝液
に懸濁し、次いで、短時間音波処理し、使用するまで4
℃で貯蔵した。
5mgを入れた懸濁液にアビジン2mgを添加した。室
温で2時間インキュベートした後、PBS中3%ウシ血
清アルブミン5mlを添加した。2時間放置した後、P
BS中1%ウシ血清アルブミンに入れたビオチン化抗ヒ
ト絨毛性ゴナドトロピン0.5mgを添加した。さらに
1時間インキュベートした後、混合物を3回遠心分離し
た。最終ペレットを、実施例12に記載のような緩衝液
に懸濁し、次いで、短時間音波処理し、使用するまで4
℃で貯蔵した。
【0110】実施例21
バルカンXC72炭素粒子10mgを、40mM塩化ナ
トリウムおよび2%デキストラン9,400を含有する
20mMトリス−塩酸塩緩衝液(pH6.8)2ml中
でホモジナイズした。室温で2時間インキュベートした
後、該溶液に、トリス−塩酸塩緩衝液1mlにフルオレ
セインイソチオシアナート5mgを溶解した溶液を添加
した。混合物を短時間音波処理し、室温で約12時間イ
ンキュベートした。インキュベーションの後、該炭素溶
液に、0.1M塩化ナトリウムに入れた0.1Mリン酸
ナトリウム緩衝液(pH7.6)20mlを添加し、次
いで、4℃、15,000RPMで遠心分離した。この
工程を3回繰り返し、得られたペレットをリン酸緩衝液
20mlに懸濁した。
トリウムおよび2%デキストラン9,400を含有する
20mMトリス−塩酸塩緩衝液(pH6.8)2ml中
でホモジナイズした。室温で2時間インキュベートした
後、該溶液に、トリス−塩酸塩緩衝液1mlにフルオレ
セインイソチオシアナート5mgを溶解した溶液を添加
した。混合物を短時間音波処理し、室温で約12時間イ
ンキュベートした。インキュベーションの後、該炭素溶
液に、0.1M塩化ナトリウムに入れた0.1Mリン酸
ナトリウム緩衝液(pH7.6)20mlを添加し、次
いで、4℃、15,000RPMで遠心分離した。この
工程を3回繰り返し、得られたペレットをリン酸緩衝液
20mlに懸濁した。
【0111】上記懸濁液2mlにウシ血清アルブミン2
mgを添加し、該混合物を6時間インキュベートし、次
いで、3回遠心分離した。過剰量のグルタルアルデヒド
(1%)を添加し、室温で3時間インキュベートした後
、遠心分離によって除去した。充分量のジメチルホルム
アミドを添加し、この混合物を室温で3回インキュベー
トした。最終ペレットを、実施例12に記載のような緩
衝液中で懸濁し、次いで、短時間音波処理し、使用する
まで4℃で貯蔵した。
mgを添加し、該混合物を6時間インキュベートし、次
いで、3回遠心分離した。過剰量のグルタルアルデヒド
(1%)を添加し、室温で3時間インキュベートした後
、遠心分離によって除去した。充分量のジメチルホルム
アミドを添加し、この混合物を室温で3回インキュベー
トした。最終ペレットを、実施例12に記載のような緩
衝液中で懸濁し、次いで、短時間音波処理し、使用する
まで4℃で貯蔵した。
【図1】 代表的な一方向性検査装置の断面図である
。
。
【図2】 第2の代表的な具体的な一方向性検査装置
の断面図である。
の断面図である。
【図3】 代表的な二方向性検査装置の断面図である
。
。
【図4】 単一の穴部を有するプラスチック製容器中
に入れた図2で示したような検査装置(部分的に隠れ線
で示した)の斜視図である。
に入れた図2で示したような検査装置(部分的に隠れ線
で示した)の斜視図である。
【図5】 多方向性検査装置の平面図である。
【図6】 2つの穴部を有するプラスチック製容器に
入れた図2で示したような検査装置(部分的に隠れ線で
示した)の斜視図である。
入れた図2で示したような検査装置(部分的に隠れ線で
示した)の斜視図である。
10、110、210、310、510・・・貯蔵パッ
ド、 12、14、112A、112B、114A、114B
、312、314、512、514・・・フィルター素
子、 16、116A、116B、216、316、516・
・・吸上膜、 18、118A、118B、218、318、518・
・・検査指標域、 20、320・・・基板、 222、522・・・ケーシング、 224、524、530・・・穴部、 226・・・窓 228、528・・・検査指標制御域。
ド、 12、14、112A、112B、114A、114B
、312、314、512、514・・・フィルター素
子、 16、116A、116B、216、316、516・
・・吸上膜、 18、118A、118B、218、318、518・
・・検査指標域、 20、320・・・基板、 222、522・・・ケーシング、 224、524、530・・・穴部、 226・・・窓 228、528・・・検査指標制御域。
Claims (53)
- 【請求項1】 基板部材と該基板部材上に配置された
配列とからなり;該配列が、(i)検査すべき液体試料
を受け入れかつ収容するのに充分な多孔度および容量を
有する貯蔵パッドと、(ii)該貯蔵パッドに対して遠
位的に配置され、貯蔵パッド中に受け入れた試料の実質
的な量を吸収するのに充分な多孔度および容量を有する
吸上膜と、(iii)該吸上膜と貯蔵パッドの間で、こ
れらと接して配置された少なくとも1つのフィルター域
であって、(a)貯蔵パッドからフィルター域への液体
試料の通過を計量するために該貯蔵パッドの容量に対し
て充分に小さいパッドの表面に接して横断しており、(
b)貯蔵パッドから吸上膜まで試料中の特異的リガンド
−レセプター複合体を通過させるが、試料中に含まれる
大きい成分の通過を妨害するように作動するフィルター
域と、からなり、該吸上膜の少なくとも1つの帯域に配
置され、検査指標を規定し、試料中に含まれる特異的リ
ガンド−レセプター複合体と結合して検査指標を形成す
ることができる固定化物質を有することを特徴とする免
疫化学的検査装置。 - 【請求項2】 基板部材がプラスチックまたはガラス
である請求項1記載の検査装置。 - 【請求項3】 貯蔵パッドが基板部材を越えて広がっ
ている請求項1記載の検査装置。 - 【請求項4】 特異的リガンド−レセプター複合体を
生成することのできる少なくとも1つの試薬がフィルタ
ー域の少なくとも一部分において全体にわたって均等に
含浸されている請求項1記載の検査装置。 - 【請求項5】 試薬が標識を担持する請求項4記載の
検査装置。 - 【請求項6】 標識が直接標識である請求項5記載の
検査装置。 - 【請求項7】 標識が金属ゾル、非金属ゾル、染料ゾ
ル、色指示薬または粒状ラテックスである請求項6記載
の検査装置。 - 【請求項8】 標識が炭素ゾルである請求項7記載の
検査装置。 - 【請求項9】 標識が間接標識である請求項6記載の
検査装置。 - 【請求項10】 試薬および固定化物質がリガンド結
合分子である請求項4記載の検査装置。 - 【請求項11】 試薬および固定化物質のうち少なく
とも1つがモノクローナル抗体である請求項4記載の検
査装置。 - 【請求項12】 試薬および固定化物質のうち少なく
とも1つがポリクローナル抗体である請求項4記載の検
査装置。 - 【請求項13】 固定化物質がリガンドである請求項
1記載の検査装置。 - 【請求項14】 固定化物質が抗原またはハプテンで
ある請求項13記載の検査装置。 - 【請求項15】 フィルター域が、貯蔵パッドから第
1フィルター域への液体試料の通過を計量するために貯
蔵パッドに隣接し、かつ貯蔵パッドの容量に対して充分
に小さいパッドの表面に接して横切る基板部材上に配置
された少なくとも1つの第1フィルター素子と;各第1
フィルター素子に隣接し、貯蔵パッドと遠位的に基板部
材上に配置された第2フィルターであって、試料中の特
異的リガンド−レセプター複合体を通過させるが、試料
中に含有されている大きい成分の通過を妨害するように
作動する第2フィルター素子とからなる請求項1記載の
検査装置。 - 【請求項16】 特異的リガンド−レセプター複合体
を生成する少なくとも1つの試薬が第1フィルター素子
の少なくとも一部分において全体にわたって均等に含浸
されている請求項15記載の検査装置。 - 【請求項17】 パッド、第1フィルター素子、第2
フィルター素子、および吸上膜が、各々、微孔性膜物質
からなる請求項16記載の検査装置。 - 【請求項18】 微孔性膜がナイロン、セルロース物
質、ポリスルホン、ポリ二フッ化ビニリデン、またはポ
リエステルからなる請求項17記載の検査装置。 - 【請求項19】 特異的リガンド−レセプター複合体
の生成または結合を増強するための添加剤が第1フィル
ター素子中に存在している請求項1記載の検査装置。 - 【請求項20】 該装置を囲んでいる水分不透過性容
器を有し、該容器は、その中に規定された開口を有し、
開口周囲の上部表面が湾曲し、かつ下方に広がり、貯蔵
パッドの一部分で終わり、そこで堅く嵌合しているカッ
プ様容器を形成しており、該開口は貯蔵パッドにおける
液体試料の通過を受け入れかつ計量するように作動し、
さらに該容器は検査指標域の上方に配置された該帯域を
肉眼で検査できるようにする手段を有している請求項1
記載の検査装置。 - 【請求項21】 免疫学的に活性なリガンドまたはリ
ガンド結合分子で、吸着点より遠位的に停止する成分を
吸着的に固定化させた微粒子状カーボンブラックからな
ることを特徴とする免疫化学的標識。 - 【請求項22】 該成分がカーボンブラックの表面上
に吸着されている免疫学的に活性なハプテン、抗原、ま
たは抗体を含む請求項21記載の免疫化学的標識。 - 【請求項23】 該成分が結合試薬と共有的に結合し
た免疫学的リガンドまたはリガンド結合分子からなり、
該結合試薬をカーボンブラックの表面上に吸着している
請求項21記載の免疫化学的標識。 - 【請求項24】 結合試薬がイミド、アジド、イソチ
オシアナート、イミドエステル、またはジアルデヒドで
ある請求項23記載の免疫化学的標識。 - 【請求項25】 結合試薬がマレイミド、スクシンイ
ミド、フェニルアジド、グルタルアルデヒド、またはN
−ヒドロキシスクシンイミドエステルである請求項24
記載の免疫化学的標識。 - 【請求項26】 結合試薬がイソチオシアナートであ
る請求項25記載の免疫化学的標識。 - 【請求項27】 イソチオシアナートがフェニルイソ
チオシアナート、4,4’−ジイソチオシアノスチルベ
ン−2,2’−ジスルホン酸、4−N,N−ジメチルア
ミノアゾベンゼン−4’−イソチオシアナート、フルオ
レセインイソチオシアナート、またはローダミンイソチ
オシアナートである請求項26記載の免疫化学的標識。 - 【請求項28】 結合試薬がフェニルイソチオシアナ
ートである請求項26記載の免疫化学的標識。 - 【請求項29】 結合試薬が4,4’−ジイソチオシ
アノスチルベン−2,2’−ジスルホン酸である請求項
26記載の免疫化学的標識。 - 【請求項30】 結合試薬が4−N,N−ジメチルア
ミノアゾベンゼン−4’−イソチオシアナートである請
求項26記載の免疫化学的標識。 - 【請求項31】 イソチオシアナートがフルオレセイ
ンイソチオシアナートである請求項26記載の免疫化学
的標識。 - 【請求項32】 結合試薬がローダミンイソチオシア
ナートである請求項26記載の免疫化学的標識。 - 【請求項33】 微粒子状カーボンブラックおよびそ
れに吸着的に固定化された固定化成分が約200〜約2
0,000の分子量を有するポリエチレングリコールま
たは約10,000〜約500,000の分子量を有す
るデキストランで被覆された請求項21記載の免疫化学
的標識。 - 【請求項34】 デキストランが約10,000〜約
50,000の分子量を有している請求項33記載の免
疫化学的標識。 - 【請求項35】 ポリエチレングリコールが約5,0
00〜約12,000の分子量を有している請求項33
記載の免疫化学的標識。 - 【請求項36】 成分がタンパクに結合した免疫化学
的リガンドまたはリガンド結合分子からなり、該タンパ
クがカーボンブラックの表面上に吸着されている請求項
21記載の免疫化学的標識。 - 【請求項37】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子が免疫学的結合を介してタンパクと共有的に結合
している請求項36記載の免疫化学的標識。 - 【請求項38】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子が結合試薬を介してタンパクと共有的に結合して
いる請求項36記載の免疫化学的標識。 - 【請求項39】 成分がタンパクに結合された免疫学
的リガンドまたはリガンド結合分子からなり、該タンパ
クが結合試薬と共有的に結合しており、該結合試薬がカ
ーボンブラックの表面上に吸着されている請求項21記
載の免疫化学的標識。 - 【請求項40】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子が第2の結合試薬を介してタンパクと共有的に結
合している請求項39記載の免疫化学的標識。 - 【請求項41】 請求項21記載の免疫化学的標識を
含む水性懸濁液。 - 【請求項42】 pHを、固定化免疫学的リガンドが
安定であり、約6〜9の範囲内に低下させる少なくとも
1つの緩衝液を含む請求項41記載の水性懸濁液。 - 【請求項43】 pHを約6.5〜約8.5にする少
なくとも1つの緩衝液を含む請求項42記載の水性懸濁
液。 - 【請求項44】 同時または逐次に、結合試薬を、(
i)免疫学的リガンドまたはリガンド結合分子と一緒に
共有的に反応させ、(ii)微粒子状カーボンブラック
上に吸着させることによって、免疫学的リガンドまたは
リガンド結合分子を微粒子状カーボンブラックと結合さ
せることを特徴とする請求項23記載の免疫化学的標識
の製造方法。 - 【請求項45】 免疫化学的標識を約100〜約20
,000の分子量を有するポリエチレングリコールの水
溶液と接触させる請求項44記載の製造方法。 - 【請求項46】 微粒子カーボンブラックを約10,
000〜約500,000の分子量を有するデキストラ
ンの水溶液と接触させる請求項44記載の製造方法。 - 【請求項47】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子を、イミド、アジド、イソチオシアナート、イミ
ドエステル、またはジアルデヒドを介して微粒子状カー
ボンブラックと結合させる請求項44記載の製造方法。 - 【請求項48】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子を、イソチオシアナートを介して微粒子状カーボ
ンブラックと結合させる請求項44記載の製造方法。 - 【請求項49】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子を、フェニルイソチオシアナート、4,4’−ジ
イソチオシアノスチルベン−2,2’−ジスルホン酸、
4−N,N−ジメチルアミノアゾベンゼン−4’−イソ
チオシアナート、フルオレセインイソチオシアナート、
またはローダミンイソチオシアナートを介して微粒子状
カーボンブラックと結合させる請求項44記載の製造方
法。 - 【請求項50】 pHを約6〜9の範囲内に低下させ
、固定化された免疫学的リガンドまたはリガンド結合分
子が安定であるpHに緩衝された水性媒質に、結合した
免疫学的リガンドまたはリガンド結合分子および微粒子
状カーボンブラックを懸濁させる請求項44記載の製造
方法。 - 【請求項51】 水性懸濁液を少なくとも1つの生物
学的に許容されるイオンまたはノニオン界面活性剤で処
理する請求項50記載の製造方法。 - 【請求項52】 免疫学的リガンドまたはリガンド結
合分子と分析物間の反応を用いる免疫化学的試験装置に
おいて、反応中の免疫学的に活性なリガンドまたはリガ
ンド結合分子で、吸着点から遠位的に停止する成分を吸
着的に固定化した微粒子状カーボンブラックからなる免
疫化学的標識を用いることを特徴とする改良された装置
。 - 【請求項53】 該装置を囲んでいる水分不透過性容
器を含み、該容器は、その中に規定された第1の開口を
有し、その開口周囲の上部表面が湾曲し、かつ下方に広
がって、貯蔵パッドの一部分で終わり、そこで堅く嵌合
しているカップ様容器を形成しており、該開口は貯蔵パ
ッドにおける液体試料の通過を受け入れかつ計量し、ま
た該容器は第2フィルター素子のすぐ上方に規定される
第2の開口を有し、該開口は第2フィルター素子に試料
を直接適用し、さらに該容器は検査指標域の上方に配置
された該帯域を肉眼で検査するための手段を有する請求
項1記載の検査装置。
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