JP2006522738A - エリスロポエチン：エリスロポエチンの改造および複合糖質化 - Google Patents

Abstract

【課題】 貧血症、腎臓透析患者を治療するに有効なペプチドおよびその製造方法を提供する。
【解決手段】 一つもしくはそれ以上のグリコシル基をペプチドに付加もしくは除去すること、および／または修飾基をペプチドに付加する方法により、ペプチド分子を改造する。

Description

発明の背景
天然に存在するほとんどのペプチドは、主ペプチド鎖長に沿って選択された数のアミノ
酸へ特異的な連結を介してペプチドに結合している炭水化物部分を含む。このように多く
の天然に存在するペプチドは「糖ペプチド（ｇｌｙｃｏｐｅｐｔｉｄｅ）」と呼ばれてい
る。任意の上記ペプチドに関するグリコシル化パターンの可変性は、そのペプチドの機能
について膨大な意味を有する。例えばペプチド上のＮ−結合グリカン構造は、細胞または
生物中のペプチドのプロテアーゼ感受性、細胞内トラフィッキング、分泌、組織ターゲッ
ティング、生物学的半減期および抗原性を含むペプチドの様々な特性に影響を及ぼすこと
ができる。これら１以上の特性の改変は、ペプチドの天然な状況でその効力に大きく影響
し、そしてまたペプチドが治療薬の目的に生成された状況では、治療薬としてのペプチド
の効力にも影響する。

ペプチド鎖に結合した炭水化物の構造は、「グリカン（ｇｌｙｃａｎ）」分子として知
られている。ペプチド上の特別なグリカン構造はペプチドの可溶性および凝集特性、１次
ペプチド鎖のホールディング、したがってその機能的または酵素的活性、タンパク質分解
的攻撃に対するペプチドの耐性およびペプチドの不活性形から活性形への転換を導くタン
パク質分解の制御に影響を及ぼす。重要なことはグリカン分子上に存在する末端シアル酸
残基が哺乳動物の循環系でペプチドの半減期の長さに影響することである。グリカンが末
端シアル酸残基を含まないペプチドは肝臓により循環から急速に除去され、この出来事が
ペプチドの潜在的な治療的利益を無効にする。

天然に存在する糖ペプチドに見いだされるグリカン構造は典型的には２種類、Ｎ−結合
およびＯ−結合グリカンに分けられる。

真核細胞で発現されるペプチドは、典型的には配列アスパラギン−Ｘ−セリン／トレオ
ニン（ここでＸはプロリンおよびアスパラギン酸以外の任意のアミノ酸であることができ
る）を含むペプチドの１次構造中の部位のアスパラギン残基上でＮ−グリコシル化されて
いる。そのようなペプチドの炭水化物部分はＮ−結合グリカンとして知られている。Ｎ−
グリコシル化の初期の反応（ｅｖｅｎｔ）は小胞体（ＥＲ）中で起こり、そして哺乳類、
植物、昆虫および他の高等真核生物で同一である。最初に１４個の糖残基を含んでなるオ
リゴ糖が脂質担体分子上に構築される。新生ペプチドはＥＲへ翻訳およびトランスロケー
ションされるので、全オリゴ糖鎖は膜結合グリコシルトランスフェラーゼ酵素により触媒
される反応でアスパラギン残基のアミド基に転移する。Ｎ−結合グリカンはさらにＥＲお
よびゴルジ装置内の両方でプロセッシングされる。さらなるプロセッシングは一般に除去
および付加される糖残基について特異的なグリコシラーゼおよびグリコシルトランスフェ
ラーゼにより触媒される反応で、幾つかの糖残基の除去および他の糖残基の付加を伴う。

典型的にはＮ−結合グリカンの最終的構造はペプチドが生産される生物に依存する。例
えば一般に、細菌中で生産されるペプチドは完全に非グリコシル化である。昆虫細胞中で
発現されるペプチドは中でも高マンノース、ポンチ（ｐａｕｎｃｉ）−マンノースＮ−結
合オリゴ糖鎖を含む。哺乳動物の細胞培養で生産されるペプチドは通常、例えば種および
細胞培養条件に依存して様々にグリコシル化される。同じ種および同じ条件下でも、時々
、グリコシル鎖における特定量の異質性に遭遇する。さらに植物細胞中で生産されるペプ
チドは、動物細胞中で生産されるものとは有意に異なるグリカン構造を含んでなる。組換
えペプチドの生産分野、特にペプチドが治療薬として使用される時のジレンマは、正しく
グリコシル化されたペプチドを生成できることであり、すなわち天然に存在するペプチド
の形態上に存在するものに似ているか、または同一のグリカン構造を有するペプチドを生
成できることである。組換え手段により生産されるほとんどのペプチドが、天然に存在す
るグリカンとは異なるグリカン構造を含んでなる。

当該技術分野において様々な方法がペプチドのグリコシル化パターンをカスタマイズす
るために提案され、それらにはとりわけ特許文献１、特許文献２、特許文献３および特許
文献４を含む。本質的にはペプチドのインビトログリコシル化に必要な多くの酵素がクロ
ーン化され、そして配列決定された。中にはこれらの酵素がインビトロで使用され、そし
て特異的な糖がペプチド上の不完全なグリカン分子に加えられた場合もある。他の例では
、発現したペプチド上へ所望の糖部分の付加が細胞内で起こるように、細胞を遺伝的に操
作して酵素および所望のペプチドの組み合わせを発現させた。

ペプチドはＯ−結合グリカンの付加によっても修飾することができ、これはそれらのム
チン様糖ペプチド上での広がり（ｐｒｅｖａｌｅｎｃｅ）によりムチン−型グリカンとも
呼ばれている。アスパラギン残基に結合し、そして脂質−結合中間体からのオリゴ糖のｅ
ｎ ｂｌｏｃ転移により形成されるＮ−グリカンとは異なり、Ｏ−グリカンは主にセリン
およびトレオニン残基に結合し、そしてヌクレオチド糖から糖の段階的付加により形成さ
れる（非特許文献１；および非特許文献２）。ペプチドの機能はそれに存在するＯ−結合
グリカン構造により影響され得る。例えばＰ−セレクチンリガンドの活性は、それに存在
するＯ−結合グリカン構造により影響を受ける。Ｏ−結合グリカン構造の総説については
、非特許文献３を参照にされたい。他のグリコシル化パターンはグリコシルホスファチジ
ルイノシトールをタンパク質のカルボキシル−末端カルボキシル基に連結することにより
形成される（非特許文献４；および非特許文献５）。

現在、ペプチドのＮ−結合グリカンを修飾するために様々な技術が存在するが、当該技
術分野には所望する、すなわちカスタマイズされたグリコシル化パターンを有するペプチ
ドの一般的に応用できる生産法の必要性が存在する。当該技術分野では生成するペプチド
を工業的規模で生産することができる、ペプチドのカスタマイズされたインビトログリコ
シル化について特別な必要性が存在する。この、および他の必要性が本発明により満たさ
れる。

特定の生理学的応答を生じるためにグリコシル化および非−グリコシル化ペプチドを投
与することは医学分野では周知である。中でもこの目的に使用されている最も知られてい
るペプチドは、糖尿病を処置するために使用されているインスリンである。酵素もそれら
の治療的利益のために使用されてきた。治療用ペプチドの使用を制限する主な要因は、ほ
とんどのペプチドの免疫原性である。患者では投与されたペプチドに対する免疫原性応答
がペプチドを中和し、かつ／または患者にアレルギー応答の発生を導き得る。治療用ペプ
チドの他の欠点には最適状態には及ばない効力および急速な排除速度（ｃｌｅａｒａｎｃ
ｅ ｒａｔｅ）を含む。ペプチド治療薬に固有の問題が当該技術分野では認識されており
、そしてこの問題の様々な排除法が調査された。可溶性ペプチド治療薬を提供するために
、合成ポリマーがペプチド骨格に付けられた。

ポリ（エチレングリコール）（""ＰＥＧ"）はペプチドに結合されたポリマーの１例で
ある。ペプチド治療薬を誘導化するためのＰＥＧの使用はペプチドの免疫原性を下げ、そ
して循環からの排除時間を長くすることが示された。例えば特許文献５（Ｄａｖｉｓ ｅ
ｔ ａｌ．）は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）またはポリプロピレングリコールに
カップリングした酵素およびペプチドホルモンのような非−免疫原性ペプチドに関する。
１モルのペプチドあたり１０から１００モルの間のポリマーが使用され、そして少なくと
も１５％の生理学的活性が維持される。

特許文献６（Ｖｅｒｏｎｅｓｅ ｅｔ ａｌ．）は、ポリエチレングリコール−修飾化
タンパク質分解酵素の活性を、タンパク質分解酵素を高分子化インヒビターに連結するこ
とにより維持する方法に関する。結合物は医学的応用を意図している。

ペプチドへのＰＥＧ結合の主な様式およびその誘導体は、ペプチドのアミノ酸残基を介
する非特異的結合である。例えば特許文献７は、ＰＥＧに共有結合した酵素の酵素的に活
性なポリマー−酵素結合物を開示する。同様に特許文献８は、α−１プロテアーゼインヒ
ビターと、ＰＥＧまたはメトキシポリ（エチレングリコール）（"ｍＰＥＧ"）のような
ポリマーの共有結合複合体を開示する。Ａｂｕｃｈｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，（非特許
文献６）は、ｍＰＥＧのウシ血清アルブミンのアミン基への共有結合を開示する。特許文
献９はインターフェロンをポリ（エチレン無水琥珀酸）のようなジカルボン酸の無水物に
結合することにより、インターフェロンをより低い疎水性にする方法を開示する。特許文
献１０はＰＥＧおよびポリ（オキシエチル化）ポリオールの、インターフェロン−β、イ
ンターロイキン−２およびイムノトキシンのようなタンパク質への結合を開示する。特許
文献１１は、リンホカインの少なくとも１つの１級アミノ基に直接結合したＰＥＧを含有
するＩＬ−２のような化学的に修飾したリンホカインを開示し、そして特許請求する。特
許文献１２は、多糖のようなポリマー性基質に共有結合したタンパク質分解酵素の水溶性
複合体の製薬学的組成物を開示する。

ＰＥＧをペプチドに結合する別の様式は、ペプチド上のグリコシル残基の非−特異的な
酸化を介する。酸化された糖はＰＥＧ部分をペプチドに結合させるための部位として利用
する。例えばＭ'Ｔｉｍｋｕｌｕ（特許文献１３）は、ＰＥＧを糖タンパク質へ付加する
ためにヒドラジン−またはアミノ−ＰＥＧの使用を開示する。グリコシル部分は対応する
アルデヒドに無作為に酸化され、これは続いてアミノ−ＰＥＧにカップリングされる。

上記に開示した各方法では、ポリ（エチレングリコール）が無作為な非特異的様式でペ
プチド骨格の反応性残基に付加される。治療用ペプチドを生産するために、特異的に標識
され、容易に特性決定可能な、本質的に均一な生成物をもたらす誘導化法を利用すること
が望ましいのは明らかである。

主要な２種類の酵素、グリコシルトランスフェラーゼ（例えばシアリルトランスフェラ
ーゼ、オリゴサッカリルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェ
ラーゼ）およびグリコシダーゼが炭水化物の合成に使用されている。グリコシダーゼはさ
らにエキソグリコシダーゼ（例えばβ−マンノシダーゼ、β−グルコシダーゼ）およびエ
ンドグリコシダーゼ（例えばエンド−Ａ、エンド−Ｍ）に分類される。これらの種類の各
酵素は、炭水化物を調製するために成功裏に合成的に使用されてきた。一般的な総説につ
いては、非特許文献７を参照にされたい。

グリコシルトランスフェラーゼはペプチド上のオリゴ糖構造を修飾する。グリコシルト
ランスフェラーゼは良好な立体化学的および位置化学的制御で特異的生成物を生産するた
めに効果的である。グリコシルトランスフェラーゼはオリゴ糖を調製し、そして末端Ｎ−
およびＯ−結合炭水化物構造、特に哺乳動物細胞で生産されたペプチドを修飾するために
使用されてきた。例えば糖ペプチドの末端オリゴ糖は完全にシアル化および／またはフコ
シル化されてより一貫した糖構造を提供し、これは糖ペプチドの薬物動態学および種々の
他の生物学的特性を改善する。例えばβ−１，４−ガラクトシルトランスフェラーゼを使
用してラクトサミンを合成し、これは炭水化物の合成におけるグリコシルトランスフェラ
ーゼの用途の具体例である（例えば非特許文献８を参照にされたい）。さらに多くの合成
手順がシチジン−５'−モノホスホ−Ｎ−アセチルノイラミン酸からシアル酸をガラクト
ースの３−ＯＨまたは６−ＯＨへ転移するために、α−シアリルトランスフェラーゼを使
用した（非特許文献９を参照にされたい）。フコシルトランスフェラーゼはグアノシン−
５'−ジホスホフコースからフコース単位をサッカリド受容体の特異的なヒドロキシルへ
転移させるための合計経路で使用される。例えばＩｃｈｉｋａｗａは、クローン化された
フコシルトランスフェラーゼを用いてシアリル化ラクトサミンのフコシル化が関与する方
法により、シアリルルイス−Ｘを調製した（非特許文献１０）。治療的使用について複合
糖質合成における最近の進歩についての考察は、非特許文献１１を参照にされたい。また
特許文献１４；１５；１６；１７；および１８も参照にされたい。

グリコシダーゼはまた、サッカリドを調製するためにも使用することができる。グリコ
シダーゼは通常はグリコシド結合の加水分解を触媒する。しかし適切な条件下でそれらは
この結合を形成するために使用することができる。炭水化物合成に使用するほとんどのグ
リコシダーゼはエキソグリコシダーゼであり；グリコシル転移は基質の非−還元末端で起
こる。グリコシダーゼはグリコシル−酵素中間体中のグリコシル供与体に結合し、これは
水に遮断されて加水分解産物を生じるか、または受容体により遮断されて新たなグリコシ
ドまたはオリゴ糖を生じるいずれかである。エキソグリコシダーゼを使用した経路の例は
、β−マンノシダーゼの作用により形成されるβ−マンノシド結合を含むすべてのＮ−結
合糖ペプチドのコア（ｃｏｒｅ）となる三糖の合成である（非特許文献１２）。

グリコシド結合を形成するためのグリコシダーゼの使用の別の応用例では、突然変異グ
リコシダーゼが調製され、ここで活性部位内の標準的な求核性アミノ酸が非求核性アミノ
酸に変えられる。突然変異酵素はグリコシド結合を加水分解しないが、それらを形成する
ことはできる。そのような突然変異グリコシダーゼは、α−グリコシルフルオリド供与体
およびグリコシド受容体分子を使用してオリゴ糖を調製するために使用される（Ｗｉｔｈ
ｅｒｓ ｅｔ ａｌ．，特許文献１９）。

エンドグリコシダーゼの使用はエキソグリコシダーゼよりも一般的ではないが、エンド
グリコシダーゼも炭水化物を調製するために使用されている。エンドグリコシダーゼの使
用に基づく方法は、単糖よりもオリゴ糖を転移する利点を有する。オリゴ糖フラグメント
は、エンド−Ｆ、エンド−Ｍのようなエンド−β−Ｎ−アセチルグルコサミンを使用して
基質に加えられた（非特許文献１３；および非特許文献１４）。

上記酵素の炭水化物の調製における使用に加えて、それらは糖ペプチドの合成にも応用
される。リボヌクレアーゼＢの均一なグリコフォーム（ｇｌｙｃｏｆｏｒｍ）の合成が報
告された（非特許文献１５）。リボヌクレアーゼＢの高いマンノースコア（ｃｏｒｅ）は
、糖ペプチドをエンドグリコシダーゼＨで処理することにより開裂された。この開裂は２
つのコアＧｌｃＮＡｃ残基間で特異的に起こる。次に四糖のシアリルルイスＸが、β−１
，４−ガラクトシルトランスフェラーゼ、α−２，３−シアリルトランスフェラーゼおよ
びα−１，３−フコシルトランスフェラーゼＶの順次使用により、今、均一なタンパク質
に残るＧｌｃＮＡｃアンカー部位で酵素的に再構築された。しかし各々の酵素的に触媒さ
れる工程は優れた収量で進行するものの、そのような手順は工業的規模での糖ペプチドの
生成に適合しなかった。

化学的および酵素的合成要素を組み合わせる方法が当該技術分野では知られている。例
えばＹａｍａｍｏｔｏおよび共同研究者（非特許文献１６）は、エンドグリコシダーゼを
使用した糖ペプチド、グリコシル化ペプチドＴの化学酵素的合成を報告した。Ｎ−アセチ
ルグルコサミニルペプチドは純粋に化学的な手段で合成された。このペプチドは続いてヒ
トトランスフェリンペプチドのオリゴ糖を用いて酵素的に仕上げられた（ｅｌａｂｏｒａ
ｔｅｄ）。サッカリド部分はエンド−β−Ｎ−アセチルグルコサミニダーゼで処理するこ
とによりペプチドに付加された。生成したグリコシル化ペプチドは、ペプチドＴおよびＮ
−アセチルグルコサミニルペプチドＴと比べた時、高度に安定であり、しかもタンパク質
分解に耐性であった。

レポーター基を用いてペプチド構造を修飾するために、グリコシルトランスフェラーゼ
の使用が調査された。例えばＢｒｏｓｓｍｅｒ ｅｔ ａｌ．（特許文献２０）は、シア
ル酸の蛍光−標識シチジンモノリン酸（"ＣＭＰ"）誘導体の形成、およびシアリルトラ
ンスフェラーゼ活性のアッセイ、および細胞表面、糖タンパク質およびペプチドの蛍光−
標識のアッセイに蛍光グリコシドの使用を開示する。Ｇｒｏｓｓ ｅｔ ａｌ．，（非特
許文献１７）は、同様のアッセイを記載する。Ｂｅａｎ ｅｔ ａｌ．，（特許文献２１
）は、不十分に（ｄｅｆｉｃｉｅｎｔｌｙ）グリコシル化されたタンパク質の再グリコシ
ル化を利用した、グリコシル化欠損疾患のためのアッセイを開示する。欠損タンパク質は
蛍光−標識ＣＭＰグリコシドにより再グリコシル化される。各蛍光シアル酸誘導体は、９
−位またはシアル酸内で通常はアセチル化されているアミンのいずれかで蛍光部分に置き
換えられる。蛍光シアル酸誘導体を使用するこの方法は、グリコシルトランスフェラーゼ
の存在または非−グリコシル化またはグリコシル化されていないまたは不適切にグリコシ
ル化された糖タンパク質に関するアッセイである。このアッセイは生物起源のサンプル中
の少量の酵素または糖タンパク質について行われる。修飾したシアル酸を使用して調製用
または工業的規模でグリコシル化または非−グリコシル化ペプチドを酵素的に誘導化する
ことは、従来技術では開示も示唆もされなかった。

細胞表面を、それらの表面に提示されるグリコシル残基を改変させることにより修飾す
ることに対してかなりの努力が向けられた。例えばＦｕｋｕｄａおよび共同研究者は、定
めた構造のグリコシドを細胞表面に結合する方法を開発した。この方法は、多様なグリコ
シル基質を有する、フコースおよびフコース類似体を転移することができるフコシルトラ
ンスフェラーゼの弛緩した基質特異性を活用する（非特許文献１８）。

酵素的方法は続いて化学的合成（ｃｈｅｍｉｃａｌ ｅｌａｂｏｒａｔｉｏｎ）に向け
て、糖ペプチド上のグリコシル残基を活性化するためにも使用されてきた。グリコシル残
基は典型的には、末端のガラクトース残基を対応するアルデヒドに転換するガラクトース
オキシダーゼを使用して活性化される。アルデヒドは続いてアミンを含む修飾基にカップ
リングされる。例えばＣａｓａｒｅｓ ｅｔ ａｌ．，（非特許文献１９）は、ドキソル
ビシンを組換えＭＨＣＩＩ−ペプチドキメラの酸化されたガラクトース残基に結合させた
。

グリコシル残基はケトン基を含むようにも修飾された。例えばＭａｈａｌおよび共同研
究者（非特許文献２０）は、天然な基質ではアセチル基により通常は占められている位置
にケトン官能基を有するＮ−レブリノイルマンノサミン（"ＭａｎＬｅｖ"）を調製した
。細胞はＭａｎＬｅｖで処理され、これによりケトン基を細胞表面に包含した。また非特
許文献２１；非特許文献２２；非特許文献２３；および非特許文献２４も参照にされたい
。

細胞表面の修飾法は、グリコシル化または非グリコシル化ペプチドを修飾するために細
胞の不存在下では適用されなかった。さらに細胞表面の修飾法は、修飾されたグリコシル
供与体部分をペプチドへ移す酵素的包含には利用されていない。さらにいずれの細胞表面
修飾法も、工業的規模でグリコシル−修飾ペプチドを生産するために現実的ではない。

サッカリド構造の酵素的合成（ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ｅｌａｂｏｒａｔｉｏｎ）に向け
られた努力にもかかわらず、水溶性ポリマー、治療部分、生体分子等のような修飾基を用
いて、グリコシル化および非グリコシル化ペプチドを修飾するための工業的に現実的な方
法の必要性がいまだに存在する。特に興味深いのは、修飾ペプチドが治療薬または診断薬
としての使用を強化する改善された特性を有する方法である。本発明はこれらの、および
他の必要性を満たす。
国際公開第９９／２２７６４号パンフレット 国際公開第９８／５８９６４号パンフレット 国際公開第９９／５４３４２号パンフレット 米国特許第５，０４７，３３５号明細書 米国特許第４，１７９，３３７号明細書 国際公開第９３／１５１８９号パンフレット 米国特許第４，０８８，５３８号明細書 米国特許第４，４９６，６８９号明細書 米国特許第４，４１４，１４７号明細書 国際公開第８７／０００５６号パンフレット 欧州特許第１５４，３１６号明細書 米国特許第４，０５５，６３５号明細書 国際公開第９４／０５３３２号パンフレット 米国特許第５，８７６，９８０号明細書 米国特許第６，０３０，８１５号明細書 米国特許第５，７２８，５５４号明細書 米国特許第５，９２２，５７７号明細書 国際公開第９８／３１８２６号パンフレット 米国特許第５，７１６，８１２号明細書 米国特許第５，４０５，７５３号明細書 米国特許第５，４３２，０５９号明細書 Ｔａｎｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．９０６：８１−９１（１９８７） Ｈｏｕｎｓｅｌｌ ｅｔ ａｌ．，Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊ．Ｊ．１３：１９−２６（１９９６） Ｓｃｈａｃｈｔｅｒ ａｎｄ Ｂｒｏｃｋｈａｕｓｅｎ、分岐Ｏ−結合グリカンの生合成（Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｂｒａｎｃｈｅｄ Ｏ−Ｌｉｎｋｅｄ Ｇｌｙｃａｎｓ）、１９８９、実験生物学学会（Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ）、第１〜２６頁（英国） Ｔａｋｅｄａ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．２０：３６７−３７１（１９９５） Ｕｄｅｎｆｒｉｅｎｄ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．６４：５９３−５９１（１９９５） Ａｂｕｃｈｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５２：３５７８（１９７７） Ｃｒｏｕｔ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．２：９８−１１１（１９９８） Ｗｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．４７：５４１６−５４１８（１９８２） Ｋｅｖｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｅｕｒ．Ｊ．２：１３５９−１３６２（１９９６） Ｉｃｈｉｋａｗａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１４：９２８３−９２９８（１９９２） Ｋｏｅｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １８：８３５−８４１（２０００） Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍｕｎ．９９３−９９４（１９９６） Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ．３７：１９７５−１９７８ Ｈａｎｅｄａ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ．Ｒｅｓ．２９２：６１−７０（１９９６） Ｗｉｔｔｅ Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１９：２１１４−２１１８（１９９７） Ｙａｍａｍｏｔｏ ａｎｄ ｃｏｗｏｒｋｅｒ，Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ．Ｒｅｓ．３０５：４１５−４２２（１９９８） Ｇｒｏｓｓ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌｙｔ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１８６：１２７（１９９０） Ｔｓｕｂｏｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：２７２１３（１９９６） Ｃａｓａｒｅｓ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．１９：１４２（２００１） Ｍａｈａｌ ａｎｄ ｃｏ−ｗｏｒｋｅｒｓ，Ｓｃｉｅｎｃｅ２７６：１１２５（１９９７） Ｓａｘｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ２８７：２００７（２０００） Ｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１２３：１２４２（２００１） Ｙａｒｅｍａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７３：３１１６８（１９９８） Ｃｈａｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ １０：１０４９（２０００）

発明の要約
本発明はペプチドに結合した特別なグルカン構造を有するペプチドの多数の改造方法を
含む。特別なグリカン構造を本明細書に記載するが、本発明は任意の１つの特定のグリカ
ン構造に限定されると解釈されるべきではない。加えて本明細書には特別なペプチドを記
載するが、本発明は記載するペプチドの性質に限定されるべきではなく、むしろ任意のす
べての適当なペプチドおよびその変形物を包含するべきである。

以下に記載する説明は本発明の好適な態様を開示し、そして本発明に添付する請求の範
囲の文章による説明を提供する。本発明は明らかな、または本明細書を読んだ後に明らか
になるこのような態様の任意の、そしてすべての変形態様を包含する。

本発明は、 式：

式中、
ＡＡはペプチドの末端または内部アミノ酸残基であり；
Ｘ^１−Ｘ^２は該ＡＡに共有結合したサッカリドであり、ここで
Ｘ^１は第１グリコシル残基であり；そして
Ｘ^２はＸ^１に共有結合した第２グリコシル残基であり、ここでＸ^１およびＸ^２は単糖
およびオリゴ糖残基から選択される、
を有するペプチドの無細胞のインビトロ改造方法を提供する。この方法は：
（ａ）Ｘ^２またはその糖サブユニットを該ペプチドから除去し、これにより短縮化グリカ
ンを形成し；そして
（ｂ）短縮化グリカンを、少なくとも１つのグリコシルトランスフェラーゼおよび少なく
とも１つのグリコシル供与体と、少なくとも１つのグリコシル供与体を短縮化グリカンへ
転移させるために適する条件下で接触させ、これにより該ペプチドを改造する、
ことを含んでなる。

１つの観点では、この方法はさらに
（ｃ）Ｘ^１を除去し、これによりＡＡを露出し；そして
（ｄ）ＡＡを、少なくとも１つのグリコシルトランスフェラーゼおよび少なくとも１つの
グリコシル供与体と、少なくとも１つのグリコシル供与体をＡＡへ転移させるために適す
る条件下で接触させ、これにより該ペプチドを改造する、
ことを含んでなる。

別の観点では、本発明はさらに：
（ｅ）工程（ｂ）の前に、翻訳後修飾中にサッカリドに付加した基を除去する、
ことを含んでなる。

１つの態様では、基がホスフェート、スルフェート、カルボキシレートおよびそれらの
エステルから選択される員である。

別の態様では、ペプチドは式：

式中、
ＺはＯ、Ｓ、ＮＨおよびクロスリンカーから選択される員である、
を有する。

少なくとも１つのグリコシル供与体は修飾基を含んでなり、そして修飾基は水溶性ポリ
マー、治療部分、検出可能な標識、反応性リンカー基および標的部分からなる群から選択
される員であり得る。好ましくは修飾基は水溶性ポリマーであり、そしてより好ましくは
水溶性ポリマーはポリ（エチレングリコール）を含んでなる。さらにより好ましくはポリ
（エチレングリコール）は本質的に均一分散である分子量分布を有する。

この、および幾つかの他の態様では、ペプチドは顆粒球コロニー刺激因子、インターフ
ェロン−アルファ、インターフェロン−ベータ、第ＶＩＩａ因子、第ＩＸ因子、濾胞刺激
ホルモン、エリトロポエチン、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、インターフェロ
ン−ガンマ、アルファ−１−プロテアーゼインヒビター、ベータ−グルコシダーゼ、組織
プラスミノーゲンアクチベータータンパク質、インターロイキン−２、第ＶＩＩＩ因子、
キメラ腫瘍壊死因子受容体、ウロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗
体、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体、キメラ抗−呼吸合胞体ウイルス抗体、キメラ抗−ＣＤ２０
抗体、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−腫瘍壊死因子抗体、ヒトインスリン、Ｂ型肝炎ｓＡｇおよ
びヒト成長ホルモンからなる群から選択され得る。

また本発明に含まれるのは、式：

式中、
Ｘ^３、Ｘ^４、Ｘ^５、Ｘ^６、Ｘ^７およびＸ^１７は、単糖またはオリゴ糖残基から独立して
選択され；そして
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅおよびｘは、整数０、１および２から独立して選択されるが、ただ
しａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅおよびｘから選択される少なくとも１つの員は１または２である、
を有するペプチドの無細胞のインビトロ改造方法である。この方法は；
（ａ）少なくとも１つのＸ^３、Ｘ^４、Ｘ^５、Ｘ^６、Ｘ^７またはＸ^１７、またはその糖サブ
ユニットをペプチドから除去し、これにより短縮化グリカンを形成し；そして
（ｂ）短縮化グリカンを、少なくとも１つのグリコシルトランスフェラーゼおよび少なく
とも１つのグリコシル供与体と、少なくとも１つのグリコシル供与体を該短縮化グリカン
ヘ転移させるために適する条件下で接触させ、これにより該ペプチドを改造する、
ことを含んでなる。

１つの観点では工程（ａ）の除去は、ａ、ｂ、ｃ、ｅおよびｘがそれぞれ０である短縮
化グリカンを生成する。

別の観点では、Ｘ^３、Ｘ^５およびＸ^７は（マンノース）_ｚおよび（マンノース）_ｚ−（
Ｘ^８）_ｙ、
式中、
Ｘ^８は単−およびオリゴ−糖から選択されるグリコシル部分であり；
ｙは０および１から選択される整数であり；そして
ｚは１から２０の間の整数であり、ここで
Ｚは３以上である時、（マンノース）_ｚは直鎖および分岐構造から選択される、
から成る群から選択される。

別の観点では、Ｘ^４はＧｌｃＮＡｃおよびキシロースからなる群から選択される。別の
観点ではＸ^３、Ｘ^５およびＸ^７が（マンノース）_ｕであり、ここでｕは１から２０の間の
整数から選択され、そしてｕが３以上である時、（マンノース）_ｕは直鎖および分岐構造
から選択される。

少なくとも１つの該グリコシル供与体は修飾基を含んでなり、そして修飾基は水溶性ポ
リマー、治療部分、検出可能な標識、反応性リンカー基および標的部分からなる群から選
択される員であり得る。好ましくは修飾基は水溶性ポリマーであり、そしてより好ましく
は水溶性ポリマーはポリ（エチレングリコール）を含んでなる。より一層好ましくはポリ
（エチレングリコール）は本質的に均一分散である分子量分布を有する。

さらにペプチドは顆粒球コロニー刺激因子、インターフェロン−アルファ、インターフ
ェロン−ベータ、第ＶＩＩａ因子、第ＩＸ因子、濾胞刺激ホルモン、エリトロポエチン、
顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、インターフェロン−ガンマ、アルファ−１−プ
ロテアーゼインヒビター、ベータ−グルコシダーゼ、組織プラスミノーゲンアクチベータ
ータンパク質、インターロイキン−２、第ＶＩＩＩ因子、キメラ腫瘍壊死因子受容体、ウ
ロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗体、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体、
キメラ抗−呼吸合胞体ウイルス抗体、キメラ抗−ＣＤ２０抗体、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−
腫瘍壊死因子抗体、ヒトインスリン、Ｂ型肝炎ｓＡｇおよびヒト成長ホルモンからなる群
から選択され得る。

また含まれるのは式：

式中、
ｒ、ｓおよびｔは、０および１から独立して選択される整数である、
を有するグリカンを含んでなるペプチドの無細胞のインビトロ改造方法である。この方法
は：
（ａ）ペプチドを、少なくとも１つのグリコシルトランスフェラーゼおよび少なくとも１
つのグリコシル供与体と、少なくとも１つのグリコシル供与体をグリカンへ転移させるた
めに適する条件下で接触させ、これにより該ペプチドを改造する、
ことを含んでなる。

好適な態様では、少なくとも１つのグリコシル供与体は修飾基を含んでなり、そして修
飾基は水溶性ポリマー、治療部分、検出可能な標識、反応性リンカー基および標的部分か
らなる群から選択される員であり得る。好ましくは修飾基が水溶性ポリマーであり、そし
てより好ましくは水溶性ポリマーはポリ（エチレングリコール）を含んでなる。より一層
好ましくはポリ（エチレングリコール）は本質的に均一分散である分子量分布を有する。

さらにペプチドは顆粒球コロニー刺激因子、インターフェロン−アルファ、インターフ
ェロン−ベータ、第ＶＩＩａ因子、第ＩＸ因子、濾胞刺激ホルモン、エリトロポエチン、
顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、インターフェロン−ガンマ、アルファ−１−プ
ロテアーゼインヒビター、ベータ−グルコシダーゼ、組織プラスミノーゲンアクチベータ
ータンパク質、インターロイキン−２、第ＶＩＩＩ因子、キメラ腫瘍壊死因子受容体、ウ
ロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗体、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体、
キメラ抗−呼吸合胞体ウイルス抗体、キメラ抗−ＣＤ２０抗体、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−
腫瘍壊死因子抗体、ヒトインスリン、Ｂ型肝炎ｓＡｇおよびヒト成長ホルモンからなる群
から選択され得る。

さらに別の観点では、ペプチドは式：

式中、
Ｘ^９およびＸ^１０は、単糖またはオリゴ糖残基から独立して選択され；そして
ｍ、ｎおよびｆは０および１から選択される整数である、
を有する。

別の観点では、ペプチドは式：

式中、
Ｘ^１１およびＸ^１２は、独立して選択されるグリコシル部分であり；そして
ｒおよびｘは０および１から独立して選択される整数である、
を有する。

好適な態様では、Ｘ^１１およびＸ^１２が（マンノース）_ｑであり、ここでｑは１から２
０の間の整数から選択され、そしてｑが３以上である時、（マンノース）_ｑは直鎖および
分岐構造から選択される。

別の観点では、ペプチドは式：

式中、
Ｘ^１３、Ｘ^１４およびＸ^１５は、独立して選択されるグリコシル残基であり；そして
ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋおよびｐは整数０および１から独立して選択されるが、ただし少な
くとも１つのｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋおよびｐは１である、
を有する。

本発明の観点の１つの態様では、Ｘ^１４およびＸ^１５がＧｌｃＮＡｃおよびＳｉａから
独立して選択される員であり；そしてｉおよびｋが整数０および１から独立して選択され
るが、ただし少なくとも１つのｉおよびｋは１であり、そしてｋが１ならばｇ、ｈおよび
ｊは０である。

本発明の別の観点では、ペプチドは式：

式中、
Ｘ^１６は

ここでｓ、ｕおよびｉは整数０および１から独立して選択される、
から選択される員である、
を有する請求項１に記載の方法。

本発明の１つの態様では除去がグリコシダーゼを利用する。

また本発明に含まれるのは式：

式中、
ＡＡはペプチドの末端または内部アミノ酸残基であり；
Ｘ^１は、単糖およびオリゴ糖残基から選択される、ＡＡに共有結合したグリコシル残基
であり；そして
ｕは０および１から選択される整数である、
を有するペプチドの無細胞のインビトロ改造方法である。この方法は：ペプチドを、少な
くとも１つのグリコシルトランスフェラーゼおよび少なくとも１つのグリコシル供与体と
、少なくとも１つのグリコシル供与体を該短縮化グリカンへ転移させるために適する条件
下で接触させ、ここで該グリコシル供与体は修飾基を含んでなり、これにより該ペプチド
を改造することを含んでなる。

好適な態様では、少なくとも１つのグリコシル供与体が修飾基が修飾基を含んでなり、
そして修飾基が水溶性ポリマー、治療部分、検出可能な標識、反応性リンカー基および標
的部分からなる群から選択される員であり得る。好ましくは修飾基は水溶性ポリマーであ
り、そしてより好ましくは水溶性ポリマーはポリ（エチレングリコール）を含んでなる。
さらにより一層好ましくは、ポリ（エチレングリコール）は本質的に均一分散である分子
量分布を有する。

加えてペプチドは顆粒球コロニー刺激因子、インターフェロン−アルファ、インターフ
ェロン−ベータ、第ＶＩＩａ因子、第ＩＸ因子、濾胞刺激ホルモン、エリトロポエチン、
顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、インターフェロン−ガンマ、アルファ−１−プ
ロテアーゼインヒビター、ベータ−グルコシダーゼ、組織プラスミノーゲンアクチベータ
ータンパク質、インターロイキン−２、第ＶＩＩＩ因子、キメラ腫瘍壊死因子受容体、ウ
ロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗体、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体、
キメラ抗−呼吸合胞体ウイルス抗体、キメラ抗−ＣＤ２０抗体、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−
腫瘍壊死因子抗体、ヒトインスリン、Ｂ型肝炎ｓＡｇおよびヒト成長ホルモンからなる群
から選択され得る。

本発明はさらに、ペプチドとペプチドの特性を改変する修飾基との間の共有結合物（ｃ
ｏｖａｌｅｎｔ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）を含み、ここで修飾基は完全なグリコシル連結基
を介してペプチドの予め定めたグリコシルまたはアミノ酸残基で該ペプチドに共有結合し
ている。

１つの観点では、修飾基は水溶性ポリマー、治療部分、検出可能な標識、反応性リンカ
ー基および標的部分からなる群から選択される員である。

別の観点では、修飾基および完全なグリコシル連結基前駆体が、酵素の作用を介して共
有結合した単位としてペプチドに結合し、酵素が該前駆体を完全なグリコシル連結基に転
換し、これにより該結合物を形成する。

本発明の共有結合物は：
第１の完全なグリコシル連結基を介してペプチドの第１残基に共有結合した第１修飾基
、および
第２の完全なグリコシル連結基を介してペプチドの第２残基に結合した第２グリコシル
連結基、
を含んでなる。

１つの態様では、第１残基および第２残基が構造的に同一である。別の態様では、第１
残基および第２残基が異なる構造を有する。さらなる態様では、第１残基および第２残基
がグリコシル残基である。別の態様では、第１残基および第２残基はアミノ酸残基である
。

さらに別の態様では、ペプチドが結合物（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）を形成する前に改造さ
れる。好ましくはペプチドは完全なグリコシル連結基の受容部分を導入するために改造さ
れる。

別の態様では、修飾基はポリ（エチレングリコール）を含んでなる水溶性ポリマーであ
り、別の態様では、これは本質的に均一分散である分子量分布を有することができる。

さらなる態様では、ペプチドは顆粒球コロニー刺激因子、インターフェロン−アルファ
、インターフェロン−ベータ、第ＶＩＩａ因子、第ＩＸ因子、濾胞刺激ホルモン、エリト
ロポエチン、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、インターフェロン−ガンマ、アル
ファ−１−プロテアーゼインヒビター、ベータ−グルコシダーゼ、組織プラスミノーゲン
アクチベータータンパク質、インターロイキン−２、第ＶＩＩＩ因子、キメラ腫瘍壊死因
子受容体、ウロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗体、キメラ抗−Ｈ
ＥＲ２抗体、キメラ抗−呼吸合胞体ウイルス抗体、キメラ抗−ＣＤ２０抗体、ＤＮａｓｅ
、キメラ抗−腫瘍壊死因子抗体、ヒトインスリン、Ｂ型肝炎ｓＡｇおよびヒト成長ホルモ
ンからなる群から選択される。

別の態様では、完全なグリコシル連結単位が、シアル酸残基、Ｇａｌ残基、ＧｌｃＮＡ
ｃ残基およびＧａｌＮＡｃ残基からなる群から選択される員である。

また本発明で提供されるのは、ポリマーとグリコシル化または非−グリコシル化ペプチ
ドとの間に共有結合物を形成する方法であって、ここでポリマーは、間に挿入され、そし
てペプチドとポリマーの両方に共有結合した完全なグリコシル連結基を介してペプチドに
結合している。この方法はペプチドを、ポリマーに共有的に連結したヌクレオチド糖およ
び該ヌクレオチド糖が基質であるグリコシルトランスフェラーゼを含んでなる混合物と、
結合物を形成するために十分な条件下で接触させることを含んでなる。

好適な態様では、ポリマーは水溶性ポリマーである。別の好適な態様では、グリコシル
連結基が、ペプチドに共有結合したグリコシル残基に共有結合し、そして別の態様ではグ
リコシル連結基がペプチドのアミノ酸残基に共有結合する。

さらなる態様では、ポリマーはポリアルキレンオキシドおよびポリペプチドからなる群
から選択される員を含んでなる。本発明の１態様ではポリアルキレンオキシドはポリ（エ
チレングリコール）でよい。別の態様では、ポリ（エチレングリコール）は約１〜約２０
，０００の、約１〜約５，０００の重合度、また好ましくは約１〜約１，０００の重合度
を有する。

別の態様では、グリコシルトランスフェラーゼがシアリルトランスフェラーゼ、ガラク
トシルトランスフェラーゼ、グルコシルトランスフェラーゼ、ＧａｌＮＡｃトランスフェ
ラーゼ、ＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼ、フコシルトランスフェラーゼおよびマンノシ
ルトランスフェラーゼからなる群から選択される。１つの態様ではグルコシルトランスフ
ェラーゼは組換え的に生産され、そして別の態様ではグルコシルトランスフェラーゼは組
換え原核酵素、または組換え真核酵素である。

さらなる態様では、ヌクレオチド糖がＵＤＰ−グリコシド、ＣＭＰ−グリコシドおよび
ＧＤＰ−グリコシドからなる群から選択され、そして好ましくはＵＤＰ−ガラクトース、
ＵＤＰ−ガラクトサミン、ＵＤＰ−グルコース、ＵＤＰ−グルコサミン、ＵＤＰ−Ｎ−ア
セチルガラクトサミン、ＵＤＰ−Ｎ−アセチルグルコサミン、ＧＤＰ−マンノース、ＧＤ
Ｐ−フコース、ＣＭＰ−シアル酸、ＣＭＰ−ＮｅｕＡｃからなる群から選択される。

別の態様ではペプチドは治療薬である。

さらに別の態様では、グリコシル化ペプチドが接触前に部分的に脱グリコシル化されて
いる。

さらなる態様では、完全なグリコシル連結基がシアル酸残基である。

さらにこの方法は無細胞環境で行われる。

そして別の態様では、共有結合物は単離されることができ、そして好ましくは共有結合
物が膜濾過により単離される。

また、リンカー部分により連結された第１のグリコシル化または非−グリコシル化ペプ
チドと第２のグリコシル化または非−グリコシル化ペプチド、
ここで
リンカー部分は、第１ペプチドおよびリンカー部分の間に挿入され、そして両方を共有
結合した第１の完全なグリコシル連結基を介して第１ペプチドに結合し、そして
リンカー部分は、第２ペプチドおよ該リンカー部分の間に挿入され、そして両方に共有
結合した第２の完全なグリコシル連結基を介して該第２ペプチドに結合している、
との間に共有結合物を形成する方法を提供する。この方法は：
（ａ）第１ペプチドを、第１の完全なグリコシル連結基の前駆体および第２の完全なグリ
コシル連結基の前駆体を含んでなるリンカー部分前駆体の誘導体と接触させ；
（ｂ）（ａ）からの混合物を、第１グリコシル連結基の前駆体が基質であるグリコシルト
ランスフェラーゼと、第１の完全なグリコシル連結基の前駆体を第１の完全なグリコシル
連結基に転換するために十分な条件下で接触させ、これによりリンカー部分前駆体と第１
ペプチドとの間に第１結合物を形成し；
（ｃ）第１結合物を、第２ペプチドおよび第２の完全なグリコシル基の前駆体が基質であ
るグリコシルトランスフェラーゼと、第２の完全なグリコシル連結基の前駆体を第２のグ
リコシル連結基に転換するために十分な条件下で接触させ、これによりリンカー部分と第
１グリコシル化または非グリコシル化ペプチドとの間、および第２グリコシル化または非
−グリコシル化ペプチドとの間に該結合物を形成する、
ことを含んでなる。

１つの観点では、リンカー部分が水溶性ポリマーを含んでなり、そして１つの態様では
、水溶性ポリマーがポリ（エチレングリコール）を含んでなる。

また、リンカー部分により連結された第１のグリコシル化または非−グリコシル化ペプ
チドと第２のグリコシル化または非−グリコシル化ペプチド、
ここで
リンカー部分は第１ペプチドに共有結合し、そして
リンカー部分は、第２ペプチドとリンカー部分の間に挿入され、そして両方に共有結合
した完全なグリコシル連結基を介して第２ペプチドに結合している、
との間に共有結合物を形成する方法を提供する。この方法は：
（ａ）第１ペプチドを、
第１ペプチド上の残基に相補的な反応性の反応性官能基、および完全なグリコシル連結
基の前駆体、
を含んでなるリンカー部分の活性化誘導体と、反応性官能基と残基との間に共有結合を形
成するために十分な条件下で接触させ、これにより第１結合物を形成し；そして
（ｂ）第１結合物を、第２ペプチドおよび完全なグリコシル連結基の前駆体が基質である
グリコシルトランスフェラーゼと、完全なグリコシル連結基の前駆体を完全なグリコシル
連結基に転換するために十分な条件下で接触させ、これにより第１グリコシル化または非
グリコシル化ペプチドと、第２グリコシル化または非−グリコシル化ペプチドとの間にリ
ンカー部分により連結された結合物を形成する、
ことを含んでなる。

１つの態様では、リンカー部分はポリ（エチレングリコール）であることのできる水溶
性ポリマーを含んでなる。

また提供されるのは、製薬学的に許容され得る希釈剤およびポリマーとグリコシル化ま
たは非グリコシル化ペプチドとの間の共有結合物を含んでなる製薬学的組成物であり、こ
こでポリマーは、ペプチドとポリマーとの間に挿入され、そして両ペプチドとポリマーと
に共有結合した完全なグリコシル連結基を介してペプチドに結合している。

本発明はさらに、ペプチドと修飾された糖との間に結合物を形成するための組成物を含
み、この組成物は：修飾された糖、グリコシルトランスフェラーゼおよびペプチド受容体
基質混合物を含んでなり、ここで修飾された糖は、ポリマー、治療部分および生体分子か
ら選択されるそれに共有結合した員を有する。

また本発明は 本発明の方法を使用して改造されたペプチドおよび改造されたペプチド
を含んでなる製薬学的組成物を含む。

また本発明で提供するのは、式：

式中、
ＭＳは修飾基に共有結合した糖を含んでなる修飾された糖であり；
Ｎｕはヌクレオシドであり；そして
ｂは０から２の整数である、
を有する化合物である。

１つの観点では、式：

式中、
Ｘ、Ｙ、Ｚ、ＡおよびＢは、Ｓ、ＯおよびＮＨから独立して選択される員であり；
Ｒ^２１、Ｒ^２２、Ｒ^２３、Ｒ^２４およびＲ^２５は、Ｈおよびポリマーから独立して選択
される員であり；
Ｒ^２６は、Ｈ、ＯＨおよびポリマーから選択される員であり；
Ｒ^２７はＣＯＯ⁻およびＮａ^＋から選択される員であり；
Ｎｕはヌクレオシドであり；そして
ａは１から３の整数である、
を有する化合物を含む。

本発明はさらに、式：

式中、
ＡＡはペプチドの末端または内部アミノ酸残基である、
を有するペプチドの無細胞のインビトロ改造方法を提供する。この方法は；
該ペプチドを、少なくとも１つのグリコシルトランスフェラーゼおよび少なくとも１つ
のグリコシル供与体と、少なくとも１つのグリコシル供与体を該アミノ酸残基へ転移させ
るために適する条件下で接触させ、ここでグリコシル供与体は修飾基を含んでなり、これ
により該ペプチドを改造する、
ことを含んでなる。

以下に検討する各態様では、具体的な改造スキームおよびペプチドが単に本発明の好適
態様を強調するために確認される。

したがって本発明は、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）ペプチドと修飾基との間
に結合物を形成する方法を含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してＧ−Ｃ
ＳＦペプチドに共有結合し、Ｇ−ＣＳＦペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃおよびｅは、０および１から独立して選択される員であり；
ｄは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースである、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は
（ａ）Ｇ−ＣＳＦペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび該修飾基に共有結合
した該グリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾され
たグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基の形成に適する条件下で接触させること
を含んでなる。

１つの態様ではこの方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、Ｇ−ＣＳＦペプチドをシアリダーゼと、Ｇ−ＣＳＦペプチドか
らシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法はさらに：
（ｃ）工程（ａ）の前に、Ｇ−ＣＳＦペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよび
ガラクトース供与体と、ガラクトースをＧ−ＣＳＦペプチドへ転移させるために適する条
件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法はさらに：
（ｄ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

別の態様では、この方法はさらに：
（ｅ）工程（ａ）の前に、Ｇ−ＣＳＦペプチドをＮ−アセチルガラクトサミントランスフ
ェラーゼおよびＧａｌＮＡｃ供与体と、ＧａｌＮＡｃをＧ−ＣＳＦペプチドへ転移させる
ために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法はさらに：
（ｆ）工程（ａ）の前に、Ｇ−ＣＳＦペプチドを、合成的に作用するエンド−Ｎ−アセチ
ルガラクトサミニダーゼおよびＧａｌＮＡｃ供与体と、ＧａｌＮＡｃ該Ｇ−ＣＳＦペプチ
ドへ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合
糖質から選択される員である。

上記に程度するＧ−ＣＳＦペプチドの式に関する具体的な態様では、ａ、ｂ、ｃおよび
ｅが０である。あるいはａおよびｅが０および１から独立して選択される員であり；そし
てｂ、ｃおよびｄが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄおよびｅが０および１から独立し
て選択される員である。

本発明はさらに上記方法により形成されたＧ−ＣＳＦペプチド結合物を含む。

また、インターフェロンアルファペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法も含
み、ここで修飾基は完全なグリコシル連結基を介して糖ペプチドに共有結合し、糖ペプチ
ドが：

ここで
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ａａ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄおよ
びｅｅは、０および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から２０の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり、
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、修飾基または複合糖質である、
から選択される式を有するグリコシル残基を含んでなる。

この方法は：
（ａ）糖ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼ、合成的に作用するエンド−アセチ
ルガラクトサミニダーゼおよびトランス−シアリダーゼから選択される員、および修飾基
に共有結合した該グリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでな
る修飾されたグリコシル供与体と、該完全なグリコシル連結基が形成するために適する条
件下で接触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをシアリダーゼと、糖ペプチドからシアル酸を除去
するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法はさらに：
（ｃ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

さらなる態様では、この方法はさらに：
（ｄ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをグリコシダーゼおよびシアリダーゼの組み合わせ
と接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法はさらに：
（ｅ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法はさらに：
（ｆ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼお
よびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下
で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法はまた：
（ｇ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドを、ガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラク
トース供与体と、ガラクトースを生成物へ転移させるために適する条件下で接触させるこ
とを含んでなる。

またこの方法はさらに：
（ｈ）工程（ｂ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

本発明はさらに：
（ｉ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをマンノシダーゼと、糖ペプチドからマンノースを
除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

加えて本発明はさらに：
（ｊ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基がポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

本発明に従い、そして上記に開示したインターフェロンアルファペプチドに関して、ａ
、ｂ、ｃ、ｄ、ａａおよびｂｂが１であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが、１から４の整数から
独立して選択される員であり；ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびｃｃが０およ
び１から独立して選択される員であり；そしてｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚ、ｄ
ｄおよびｅｅが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、
ｐ、ｑ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚ、ｃｃ、ｄｄおよびｅｅが０であり；ｅ、ｇ、ｉ、
ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員であり；そしてａａおよびｂｂが１で
ある。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕ
が、０および１から独立して選択される員であり；ｈが１から３の整数から独立して選択
される員であり；ｄｄ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてａａおよびｂｂが１であ
る。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよび
ｄｄが０であり；ｅ、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員であり
；そしてａａおよびｂｂが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ
、ｋ、ｌ、ｍおよびｄｄが０であり；ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０および１
から独立して選択される員であり；そしてａａおよびｂｂが１である。あるいはａ、ｂ、
ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される
員であり；ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｄｄが０であり；そしてａａおよびｂ
ｂが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ
およびｕが０および１から独立して選択される員であり；ｈが１から３の整数から独立し
て選択される員であり；ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｄｄが０であり；そしてａａおよびｂｂが
１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙ
およびｄｄが０であり；ｅ、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員
であり；そしてａａおよびｂｂが１である。あるいはｎ、ｏおよびｐが０および１から独
立して選択される員であり；ｑが１であり；そしてｚ、ｃｃおよびｅｅが０である。ある
いはｎおよびｑが０および１から独立して選択される員であり；そしてｏ、ｐ、ｚ、ｃｃ
およびｅｅが０である。あるいはｎが０であり；ｑが１であり；そしてｏ、ｐ、ｚ，ｃｃ
およびｅｅが０である。あるいはｎ、ｏ、ｐおよびｆが０および１から独立して選択され
る員であり；ｑが１であり；そしてｚおよびｅｅが０である。あるいはｎ、ｏ、ｐおよび
ｑが０および１から独立して選択される員であり；そしてｚ、ｃｃおよびｅｅが０である
。あるいはｎおよびｑが０および１から独立して選択される員であり；そしてｏ、ｐ、ｚ
、ｃｃおよびｅｅが０である。あるいはｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｚ、ｃｃおよびｅｅが０である
。

また開示された方法により形成されたインターフェロンアルファペプチド結合物を提供
する。

本発明は、インターフェロンベータペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法で
あって、修飾基が完全なグリコシル連結基を介してインターフェロンベータペプチドに共
有結合し、インターフェロンベータペプチドが式：

ここで
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選択さ
れる員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、またはグリコシル、修飾基または複合糖質基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は
（ａ）インターフェロンベータペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよびトラン
ス−シアリダーゼから選択される員および修飾基に共有結合したグリコシルトランスフェ
ラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシル供与体と、完全な
グリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、インターフェロンベータペプチドをシアリダーゼと、インター
フェロンベータペプチドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

別の態様では、この方法はさらに：
（ｃ）工程（ａ）からの生成物を、修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全な
グリコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法もさらに：
（ｄ）工程（ａ）の前に、上記インターフェロンベータペプチドをグリコシダーゼおよび
シアリダーゼの組み合わせと接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法はさらに：
（ｅ）工程（ａ）の前に、インターフェロンベータペプチドをエンドグリカナーゼと、イ
ンターフェロンベータペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

またこの方法はさらに：
（ｆ）工程（ａ）の前に、インターフェロンベータペプチドをＮ−アセチルグルコサミン
トランスフェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをインターフェロンベー
タペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

加えてこの方法はさらに：
（ｇ）工程（ａ）の前に、インターフェロンベータペプチドを、ガラクトシルトランスフ
ェラーゼおよびガラクトース供与体と、ガラクトースを生成物へ転移させるために適する
条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法はさらに：
（ｈ）工程（ｂ）の前に、インターフェロンベータペプチドをエンドグリカナーゼと、イ
ンターフェロンベータペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法はさらに：
（ｉ）工程（ａ）の前に、インターフェロンベータペプチドをマンノシダーゼと、インタ
ーフェロンベータペプチドからマンノースを除去するために適する条件下で接触させるこ
とを含んでなる。

加えて、この方法はさらに：
（ｊ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基がポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記に開示したベータインターフェロンペプチドの式に関
してｈが１から３の間の整数から独立して選択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ
、ｇ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して選択される
員であり；ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｑ、ｐが１である。あるいはａ、
ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｅ
、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員であり；そしてｑ、ｐが１
である、。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｒ、ｓ、ｔ
、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｐ、ｑが１であり；そしてｉが０および１から独
立して選択される。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、Ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ
、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｐ、ｑが１である。あるいはａ、
ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍおよびｎが０であり；ｐ、ｑが１であ
り；そしてｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０および１から独立して選択される員
である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および
１から独立して選択される員であり；ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であ
り；そしてｑ、ｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、
ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；ｅ、ｆ、ｇが０から３の間の
整数から選択される員であり；ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｑ、ｐが１で
ある。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｐおよひｑが０
および１から独立して選択される員であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；そしてｎ、
ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。

さらに含まれるのは、上記方法により形成されたインターフェロンベータペプチド結合
物である。

本発明はまた、第ＶＩＩａ因子ペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法を提供
し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して第ＶＩＩａ因子ペプチドに共有結合
し、第ＶＩＩａ因子ペプチドが：

ここで
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選
択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびｎは０から６の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から２０の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノース、オリゴマンノース、シアリルルイス^ｘ（ＳｉａｌｙｌＬｅｗ
ｉｓ^ｘ）またはシアリルルイス^ａ（ＳｉａｌｙｌＬｅｗｉｓ^ａ）である、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。

この方法は：
（ａ）第ＶＩＩａ因子ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結
合した該グリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾さ
れたグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

好適な態様では、この方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、第ＶＩＩａ因子ペプチドをシアリダーゼと、第ＶＩＩａ因子ペ
プチドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法はさらに：
（ｃ）工程（ａ）の前に、第ＶＩＩａ因子ペプチドをガラクトシダーゼと、第ＶＩＩａ因
子ペプチドからガラクトースを除去するためにに適する条件下で接触させることを含んで
なる。

別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、第ＶＩＩａ因子ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼお
よびガラクトース供与体と、ガラクトースを第ＶＩＩａ因子ペプチドへ転移させるために
適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記に開示した第ＶＩＩａ因子の式に関して、ａ、ｂ、ｃ
、ｄ、ｅ、ｇ、ｉ、ｊ、ｌ、ｏ、ｐおよびｑが、０および１から独立して選択される員で
あり；ｒおよびｔが１であり；ｆ、ｈ、ｋ、ｍ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり
；そしてｎが０から４の整数から選択される。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ
、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して
選択される員であり；ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｎが０から４の整数から選
択される員である。

加えて、本明細書に開示する方法により形成された第ＶＩＩａ因子ペプチド結合物を含
む。

本発明はさらに第ＩＸ因子ペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法を提供し、
ここで、修飾基が完全なグリコシル連結基を介して第ＩＸ因子ペプチドに共有結合し、第
ＩＸ因子ペプチドが：

ここで
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄ、ｅｅ、ｆ
ｆおよびｇｇは、０および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびａａは０から６の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から２０の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースである、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は
（ａ）第ＩＸ因子ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合し
たグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグ
リコシル供与体と、該完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させ
ることを含んでなる。

１つの態様では、この方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、第ＩＸ因子ペプチドをシアリダーゼと、第ＩＸ因子ペプチドか
らシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法はさらに：（ｃ）工程（ａ）で形成された生成物を、シアリル
トランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シアル酸を生成物へ転移させるために適す
る条件下で接触させることを含んでなる。

加えてこの方法は：
（ｄ）工程（ｂ）からの生成物を、ガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクトース
供与体と、ガラクトースを生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含
んでなる。

さらにこの方法は：
（ｅ）工程（ｄ）からの生成物を、ＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体と、シアル酸を
生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法はさらに：
（ｄ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

また、修飾基がポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖質から選択
される員であるという事実も含む。

さらなる態様において、および上記に開示した第ＩＸペプチド因子の式に関して、ａ、
ｂ、ｃおよびｄが１であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１から４の整数から独立して選択され
る員であり；ａａ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄ、ｅｅ、ｆｆ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、
ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して選択される員であり；そしてｖ、ｗ
、ｘ、ｙおよびｇｇが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｎ、ｑが０および１から独立
して選択され；ａａ、ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１から４の整数から独立して選択される員で
あり；ｂｂ、ｃｃ、ｄｄ、ｅｅ、ｆｆ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｉ、ｏ、ｐ、ｒ、ｓ、ｔおよび
ｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚおよびｇｇ
が０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｎ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄおよびｆｆが１であり；ｅ
、ｆ、ｇ、ｈおよびａａが１から４の整数から独立して選択される員であり；ｑ、ｅｅ、
ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される
員であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚおよびｇｇが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄお
よびｑが１であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１から４の整数から独立して選択される員であ
り；ａａ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄ、ｅｅ、ｆｆ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｒ、ｓ、
ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚお
よびｇｇが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｑ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄおよびｆｆが１で
あり；ａａ、ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１から４の整数から独立して選択される員であり；ｅ
ｅ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択さ
れる員であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚおよびｇｇが０である。

また上記に開示した方法により形成された第ＩＸ因子ペプチド結合物も含む。

本発明は濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）ペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法
も含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してＦＳＨペプチドに共有結合し、
ＦＳＨペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選択される
員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースである、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）ＦＳＨペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合した該
グリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリ
コシル供与体と、該完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させる
ことを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ＦＳＨペプチドをシアリダーゼと、ＦＳＨペプチドからシアル
酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物を、シアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シ
アル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、該ＦＳＨペプチドをガラクトシダーゼと、ＦＳＨペプチドから
ガラクトースを除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、ＦＳＨペプチドをグリコシダーゼおよびシアリダーゼの組み合
わせと接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、ＦＳＨペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラ
クトース供与体と、ガラクトースをＦＳＨペプチドへ転移させるために適する条件下で接
触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）からの生成物を、修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全な
グリコシル連結基と部分との間に結合物を形成する。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ｂ）の前に、ＦＳＨペプチドをエンドグリカナーゼと、ＦＳＨペプチドから
グリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、ＦＳＨペプチドをＮ−アセチルアセチルグルコサミントランス
フェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをＦＳＨペプチドへ転移させるた
めに適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、修飾基がポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複
合糖質から選択される員である。

さらに好適な態様において、および上記に開示したＦＳＨペプチドの式に関して、ａ、
ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して
選択される員であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；そしてｖ、ｗ、ｘおよびｙが０で
ある。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ
およびｕが０および１から独立して選択される員であり；ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である
。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０
であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員であ
る。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌおよびｍが０であり；ｉ、ｑ
、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０および１から独立して選択され；ｐが１であ
り；Ｒ（分岐または直鎖）はマンノースおよびオリゴマンノースから選択される員である
。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ
およびｙが０であり；ｉが０または１であり；そしてｑが１である。

また上記の方法により形成されたＦＳＨペプチド結合物も含む。

本発明はさらに、エリトロポエチン（ＥＰＯ）ペプチドと修飾基との間に結合物を形成
する方法を提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してＥＰＯペプチドに共
有結合し、ＥＰＯペプチドが：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立し
て選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から２０の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースである、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）ＥＰＯペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合したグ
リコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコ
シル供与体と、該完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させるこ
とを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ＥＰＯペプチドをシアリダーゼと、ＥＰＯペプチドからシアル
酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物を、シアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シ
アル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、ＥＰＯペプチドを合成的に作用するガラクトシダーゼと、ＥＰ
Ｏペプチドにガラクトースを付加するために適する条件下で接触させることを含んでなる
。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、ＥＰＯペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラ
クトース供与体と、ガラクトースをＥＰＯペプチドへ転移させるために適する条件下で接
触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ｅ）からの生成物をＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体と、シアル酸を生
成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｇ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

またこの方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、ＥＰＯペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェラー
ゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをＥＰＯペプチドへ転移させるために適す
る条件下で接触させることを含んでなる。

別の観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖質
から選択される員である。

好適な態様において、および上記のＥＰＯペプチドの式に関して、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ
、ｆ、ｇ、ｎおよびｑが１であり；ｈが１から３の間の整数から選択される員であり；ｉ
、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員
であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、
ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、
ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ
、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１
から独立して選択される員あり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０である。あるいはａ
、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｎおよびｑが１であり；ｈが１から３の間の整数から選択さ
れる員であり；ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独
立して選択される員であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０である。あるいはａ、ｂ
、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０であ
り；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｎ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される。ある
いはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよび
ｚが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される
員である。あるいはｑが１であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｎ、ｒ、ｓ、
ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、
ｐ、ｖ、ｗ、ｘおよびｚが０である。

また、上記の方法により形成されたＥＰＯペプチド結合物も含む。

本発明はさらに、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）ペプチドと
修飾基との間に結合物を形成する方法を提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基
を介してＧＭ−ＣＳＦペプチドに共有結合し、ＧＭ−ＣＳＦペプチドが：

ここで、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ａａ、ｂｂおよびｃｃは、０
および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨまたはグリコシル残基または修飾基または複合糖質である、
から選択される式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）ＧＭ−ＣＳＦペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合
した該グリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾され
たグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触さ
せることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ＧＭ−ＣＳＦペプチドをシアリダーゼと、ＧＭ−ＣＳＦペプチ
ドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と該部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、ＧＭ−ＣＳＦペプチドをグリコシダーゼおよびシアリダーゼの
組み合わせと接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、ＧＭ−ＣＳＦペプチドをエンドグリカナーゼと、、ＧＭ−ＣＳ
Ｆペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んで
なる。

またこの方法は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、ＧＭ−ＣＳＦペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフ
ェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをＧＭ−ＣＳＦペプチドへ転移させ
るために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、ＧＭ−ＣＳＦペプチドをマンノシダーゼと、ＧＭ−ＣＳＦペプ
チドからマンノース残基を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、ＧＭ−ＣＳＦペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体
と、シアル酸を生成物に転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

さらに好適な態様において、および上記のＧＭ−ＣＳＦペプチドの式に関して、ａ、ｂ
、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびａａが０および１か
ら独立して選択される員であり；ｂｂ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびｎが１であり；そしてｃｃ
、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、
ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびａａが０および１から独立して選択される員であり；
ｂｂ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびｎが０および１から独立して選択される員であり；そしてｃ
ｃ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０である。あるいはｃｃ、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、
ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、
ｎ、ｑ、ｒ、ｔおよびａａが０および１から独立して選択される員であり；そしてｂｂが
１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、ｐ
、ｚおよびｃｃが０であり；ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびａａが、０およ
び１から独立して選択される員であり；ｂｂが１であり；そしてＲがマンノースまたはオ
リゴマンノースである。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ
、ｏ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ａａおよびｂｂが０および１から 独立して選択される員で
あり；ｎ、ｐ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚおよびｃｃが０である。

さらに上記方法により形成されたＧＭ−ＣＳＦペプチド結合物を含む。

本発明は、インターフェロンガンマペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法も
含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してインターフェロンガンマペプチド
に共有結合し、インターフェロンガンマペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選
択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、またはグリコシル残基、複合糖質または修飾基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。

該方法は：
（ａ）インターフェロンガンマペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび合成的
に作用するガラクトシダーゼから選択される員および修飾基に共有結合したグリコシルト
ランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシル供与体
と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを含んでな
る。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、インターフェロンガンマペプチドをシアリダーゼと、インター
フェロンガンマペプチドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、インターフェロンガンマペプチドをグリコシダーゼおよびシア
リダーゼの組み合わせと接触させることを含んでなる。

この方法はまた：
（ｅ）工程（ａ）の前に、インターフェロンガンマペプチドをエンドグリカナーゼと、イ
ンターフェロンガンマペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

加えて本発明は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、インターフェロンガンマペプチドをＮ−アセチルグルコサミン
トランスフェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをインターフェロンガン
マペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

また本発明は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、インターフェロンガンマペプチドを、ガラクトシルトランスフ
ェラーゼおよびガラクトース供与体と、ガラクトースを生成物へ転移させるために適する
条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、本発明は：
（ｈ）工程（ａ）の生成物を、シアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シ
アル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖質
から選択される員である。

上記のインターフェロンガンマペプチドに関して、さらに好適な態様にはａ、ｂ、ｃ、
ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｐ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択さ
れる員であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であ
るものを含む。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０
および１から独立して選択される員であり；ｐ、ｑ、ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；そ
してｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ
、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔ
が０および１から独立して選択される員であり；そしてｐが１である。ａ、ｂ、ｃ、ｄ、
ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍおよびｎが０であり；ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ
、ｘおよびｙが０および１から独立して選択される員であり；そしてｐが１であり；そし
てＲがマンノースまたはオリゴマンノースである。ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ
、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；ｅ、ｆ、ｇ、
ｈおよびｐが１であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。

さらに上記方法により形成されるインターフェロンガンマペプチド結合物を含む。

本発明はさらに、アルファ１プロテアーゼインヒビター（Ａ−１−ＰＩ）ペプチドと修
飾基との間に結合物を形成する方法を含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介
してＡ−１−ＰＩペプチドに共有結合し、Ａ−１−ＰＩペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選
択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、またはグリコシル残基、複合糖質または修飾基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。

この方法は：
（ａ）Ａ−１−ＰＩペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合
したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾された
グリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させ
ることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、Ａ−１−ＰＩペプチドをシアリダーゼと、Ａ−１−ＰＩペプチ
ドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、こうして完全なグリ
コシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

この方法はまた：
（ｄ）工程（ａ）の前に、Ａ−１−ＰＩペチドをグリコシダーゼおよびシアリダーゼの組
み合わせ物と接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、Ａ−１−ＰＩペプチドをエンドグリカナーゼと、Ａ−１−ＰＩ
ペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでな
る。

別の態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、Ａ−１−ＰＩペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフ
ェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをＡ−１−ＰＩペプチドへ転移させ
るために適する条件下で接触させることを含んでなる。

加えて本発明は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、Ａ−１−ＰＩペプチドをマンノシダーゼと、Ａ−１−ＰＩペプ
チドからマンノースを除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに本発明は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、Ａ−１−ＰＩペプチドをマンノシダーゼ、キシロシダーゼ、ヘ
キソサミニダーゼおよびその組み合わせから選択される員と、Ａ−１−ＰＩペプチドから
グリコシル残基を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

他の好適な態様では、および上記Ａ−１ＰＩペプチドの式に関して、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、
ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員で
あり；そしてｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である
。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよ
びｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０
である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘお
よびｙが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択さ
れる員である。あるいはｎ、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌおよびｍ
が０であり；そしてｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０および１から独立して
選択される員であり；そしてｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、
ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｐおよびｑが０であり；ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙ
が０および１から独立して選択される員である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、
ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員で
あり；ｐ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｎおよびｑが１である。

また上記記載の方法により形成されるアルファ１プロテアーゼインヒビターペプチド結
合物も提供する。

また本発明にはベータグルコシダーゼペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法
を含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してベータグルコシダーゼペプチド
に共有結合し、ベータグルコシダーゼペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選
択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、またはグリコシル残基、複合糖質または修飾基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。

この該方法は：
（ａ）ベータグルコシダーゼペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に
共有結合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修
飾されたグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で
接触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ベータグルコシダーゼペプチドをシアリダーゼと、ベータグル
コシダーゼペプチドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含ん
でなる。

別の態様では、この方法はさらに：
（ｃ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、ベータグルコシダーゼペプチドをグリコシダーゼおよびシアリ
ダーゼの組み合わせ物と接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、ベータグルコシダーゼペプチドをエンドグリカナーゼと、ベー
タグルコシダーゼペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させ
ることを含んでなる。

加えて、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、ベータグルコシダーゼペプチドをＮ−アセチルグルコサミント
ランスフェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃを該ベータグルコシダーゼ
ペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、ベータグルコシダーゼペプチドをガラクトシルトランスフェラ
ーゼおよびガラクトース供与体と、ガラクトースを生成物へ転移させるために適する条件
下で接触させることを含んでなる。

別の観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖質
から選択される員である。

好適な態様において、および上記のベータグルコシダーゼペプチドの式に関して、ａ、
ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選
択される員であり；ｐ、ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙ
が０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、
ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘお
よびｙが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ
、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から独立して選
択される員であり；そしてｐが１である。あるいはｎ、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ
、ｉ、ｊ、ｋ、ｌおよびｍが０であり；ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０お
よび１から独立して選択される員であり；ｐが１であり；そしてＲがマンノースまたはオ
リゴマンノースである。

本発明はまた、上記記載の方法により形成されたベータグルコシダーゼペプチド結合物
も含む。

本発明はさらに組織プラスミノーゲンアクチベーター（ＴＰＡ）ペプチドと修飾基との
間に結合物を形成する方法を提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してＴ
ＰＡペプチドに共有結合し、ＴＰＡペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは、０お
よび１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の整数から独立して選択される員であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；
Ｒ'はＨ、またはグリコシル残基、複合糖質または修飾基であり；そして
Ｒ"はグリコシル基、複合糖質または修飾基である、
を含んでなるグリコシルサブユニットを有する。この方法は：
（ａ）ＴＰＡペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび合成的に作用するグリコ
シダーゼから選択される員および修飾基に共有結合したグリコシルトランスフェラーゼの
基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシル供与体と、完全なグリコシ
ル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ＴＰＡペプチドをシアリダーゼと、ＴＰＡペプチドからシアル
酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、ＴＰＡペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラ
クトース供与体と、ガラクトースをＴＰＡペプチドへ転移させるために適する条件下で接
触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、上記ＴＰＡペプチドをグリルコシダーゼおよびシアリダーゼの
組み合わせと接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、上ＰＡペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェラー
ゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをＴＰＡプチドへ転移させるために適する
条件下で接触させることを含んでなる。

加えてこの方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、ＴＰＡペプチドをエンドグリカナーゼと、ＴＰＡペプチドから
グリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｉ）工程（ａ）の前に、ＴＰＡペプチドをマンノシダーゼ、キシロシダーゼ、ヘキソサ
ミニダーゼおよびそれらの組み合わせから選択される員と、ＴＰＡペプチドからグリコシ
ル残基を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様では、および上記のＴＰＡペプチドの式に関して、ａ、ｂ、ｃ、ｄが１であ
り；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１から３の間の整数から選択される員であり；ｉ、ｊ、ｋ、ｌ
、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｎ、ｏ
、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、
ｎ、ｏ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｅ、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０および１
から独立して選択される員であり；そしてｑおよびｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、
ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１か
ら独立して選択される員であり；そしてｎ、ｏ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるい
はａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇおよびｐが１であり；ｈが１から３の間の整数から選択さ
れる員であり；ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｉ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して
選択される員であり；そしてｎ、ｏ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはａ、ｂ、
ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｅ、ｇ
、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から独立して選択される員であり；ｏが１であり；そ
してＲ"がキシロースである。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、
ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員であり；そしてｅ、ｆ、ｇおよび
ｈが１であり；そしてｎ、ｏ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ
、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であ
り；ｉおよびｑが０および１から独立して選択される員であり；そしてｐが１である。あ
るいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ
、ｘおよびｙが０であり；ｉおよびｑが０および１から独立して選択される員であり；ｐ
が０であり；そしてｎが１である。

また上記方法により形成されたＴＰＡペプチド結合物も含む。

本発明は、インターロイキン２（ＩＬ−２）ペプチドと修飾基との間に結合物を形成す
る方法も提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してＩＬ−２プチドに共有
結合し、ＩＬ−２ペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃおよびｅは０および１から独立して選択される員であり；
ｄは０であり；そして
Ｒは修飾基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）ＩＬ−２ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合した
グリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリ
コシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させるこ
とを含んでなる。

１つの態様では、この方法はさらに：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ＩＬ−２ペプチドをシアリダーゼと、ＩＬ−２ペプチドからシ
アル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の前に、ＩＬ−２ペプチドを合成的に作用するエンド−Ｎ−アセチルガ
ラクトサミニダーゼと、ＧａｌＮＡｃをＩＬ−２ペプチドに付加するために適する条件下
で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、本発明は：
（ｄ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と該部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

さらに、本発明は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、ＩＬ−２ペプチドをＮ−アセチルガラクトサミントランスフェ
ラーゼおよびＧａｌＮＡｃ供与体と、ＧａｌＮＡｃをＩＬ−２ペプチドへ転移させるため
に適する条件下で接触させることを含んでなる。

加えて本発明は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、ＩＬ−２ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガ
ラクトース供与体と、ガラクトースをＩＬ−２ペプチドへ転移させるために適する条件下
で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様では、および上記のＩＬ−２ペプチドの式に関して、ａおよびｅが０および
１から独立して選択される員であり；そしてｂ、ｃおよびｄが０である。あるいはａ、ｂ
、ｃ、ｄおよびｅが０である。

本発明は加えて、上記の方法により形成されたＩＬ−２ペプチド結合物を含む。

また本発明に含まれるのは、第ＶＩＩＩ因子ペプチドと修飾基との間に結合物を形成す
る方法であり、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して該糖ペプチドに共有結合
し、該糖ペプチドが：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ａａ、ｃｃおよびｄｄは、０
および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から２０の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、修飾基および複合糖質から選択される員である、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）該糖ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合したグリ
コシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシ
ル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをシアリダーゼと、糖ペプチドからシアル酸を除去
するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクト
ース供与体と、ガラクトースを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させる
ことを含んでなる。

またこの方法は：
（ｅ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と該部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｆ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼお
よびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下
で接触させることを含んでなる。

加えてこの方法は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

この方法はまた：
（ｈ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体と、シアル
酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｉ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをマンノシダーゼと、糖ペプチドからマンノースを
除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記の第ＶＩＩＩ因子ペプチドの式に関して、ｅ、ｆ、ｇ
およびｈが１から４の間の整数から独立して選択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、
ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ａａおよびｃｃが０および１から独立し
て選択される員であり；そしてｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚおよびがｄｄが０である。

また上記の方法により形成された第ＶＩＩＩペプチド結合物も提供する。

さらに本発明では、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）アルファ受容体／ＩｇＧ融合ペプチドと修
飾基との間に結合物を形成する方法を提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を
介して糖ペプチドに共有結合し、糖ペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｗ、ｗｗおよびｚは０お
よび１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の間の整数から独立して選択される員であり；
ｎ、ｖ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、修飾基および複合糖質から選択される員である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）該糖ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合した該グ
リコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコ
シル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させること
を含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクト
ース供与体と、ガラクトースを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させる
ことを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記ＴＮＦアルファ受容体／ＩｇＧ融合ペプチドの式に関
して、ａ、ｃ、ｉ、ｊおよびｌが０および１から独立して選択される員であり；ｅ、ｇ、
ｑ、ｒ、ｔおよびｚが１であり；そしてｂ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、
ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはｅ、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０および１から独立
して選択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、
ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｑおよびｚが１である。

また上記の方法により形成されたＴＮＦアルファ受容体／ＩｇＧ融合結合物も提供する
。

本発明はウロキナーゼペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法も含み、修飾基
が完全なグリコシル連結基を介してウロキナーゼペプチドに共有結合し、ウロキナーゼペ
プチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選
択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、複合糖質または修飾基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。

この方法は：
（ａ）該ウロキナーゼペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結
合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾され
たグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触さ
せることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ウロキナーゼペプチドをシアリダーゼと、ウロキナーゼペプチ
ドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、ウロキナーゼペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよ
びガラクトース供与体と、ガラクトースをウロキナーゼペプチドへ転移させるために適す
る条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、記ウロキナーゼペプチドをグリコシダーゼおよびシアリダーゼ
の組み合わせと接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これによりの完全な
グリコシル連結基と該部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

加えて、この方法は：
（ｇ）工程（ａ）の前に、ウロキナーゼペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフ
ェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをウロキナーゼペプチドへ転移させ
るために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、ウロキナーゼペプチドをエンドグリカナーゼと、ウロキナーゼ
ペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでな
る。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記のウロキナーゼペプチドの式に関して、ａ、ｂ、ｃ、
ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して選択され
る員であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが１であり；ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｐ
が１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、
ｔおよびｕが、０および１から独立して選択される員であり；ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが
０であり；そしてｐが１である。あるるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、
ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが、０
および１から独立して選択される員であり；そしてｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、
ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０で
あり；ｉが０または１であり；そしてｑおよびｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、
ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立して選択される員で
あり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが０、１、２、３および４からから独立して選択され；そして
ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ
、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｑが１であり
；そしてｎが０または１である。

また提供するのは、上記記載の方法により形成されたウロキナーゼペプチド結合物であ
る。

本発明は抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａモノクローナル抗体ペプチドと修飾基との
間に結合物を形成する方法も含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して該糖
ペプチドに共有結合し、糖ペプチドが：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｚ、ａａ、ｂｂ、ｃｃおよび
ｅｅは、０および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の整数から独立して選択される員であり；
ｎ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｄｄは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、修飾基および複合糖質から選択される員である、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）糖ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合した該グリ
コシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシ
ル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをシアリダーゼと、糖ペプチドからシアル酸を除去
するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドを合成的に作用するガラクトシダーゼと、ガラクト
シダーゼを糖ペプチドに付加するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクト
ース供与体と、ガラクトースを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させる
ことを含んでなる。

加えてこの方法は：
（ｆ）工程（ａ）からの生成物を、ＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体と、シアル酸を
生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｇ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と該部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

またこの方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼお
よびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下
で接触させることを含んでなる。

さらにこの方法は：
（ｉ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記の抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａモノクローナル
抗体ペプチドの式に関して、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ
、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して選択される員であり；ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよ
びｙが０であり；そしてｚが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、
ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；ｉおよびｒが０および１
から独立して選択される員であり；そしてｚが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、
ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍおよびｎが０であり；ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよ
びｙが０および１から独立して選択される員であり；そしてｚが１である。あるいはａａ
、ｂｂ、ｃｃおよびｅｅが０および１から独立して選択される員であり；そしてｄｄが０
である。あるいはａａおよびｅｅが０および１から独立して選択される員であり；そして
ｂｂ、ｃｃおよびｄｄが０である。あるいはａａ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄおよびｅｅが０であ
る。

また提供するのは、上記記載の方法により形成された抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩ
ａモノクローナル抗体ペプチド結合物である。

さらに本発明では、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドと修飾基との間に結合物を形成す
る方法であって、修飾基が完全なグリコシル連結基を介してキメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプ
チドに共有結合し、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびｚは、０および１から独
立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の間の整数から独立して選択される員であり；
ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
ｍは０〜２０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'は水素およびグリコシル残基および修飾基から選択される員である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）キメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基
に共有結合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる
修飾されたグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下
で接触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドをガラクトシルトランスフェ
ラーゼおよびガラクトース供与体と、ガラクトースをキメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドへ
転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の前に、キメラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドをエンドグリカナーゼと、キ
メラ抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

１つの観点では修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖質
から選択される員である。

好適な態様において、および上記の抗−ＨＥＲ２抗体ペプチドの式に関して、ａ、ｃお
よびｉが、０および１から独立して選択される員であり；ｅ、ｇ、ｒおよびｔが１であり
；ｂ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；
そしてｑおよびｚが１である。あるいはｉが０または１であり；ｑおよびｚが１であり；
そしてａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ
、ｘおよびｙが０である。あるいはｅ、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０および１から独立して選
択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ
およびｙが０であり；そしてｑおよびｚが１である。

また提供するのは、上記記載の方法により形成された抗ＨＥＲ２抗体ペプチド結合物で
ある。

本発明はさらに、抗−ＲＳＶ Ｆペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法を提
供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して抗−ＲＳＶ Ｆペプチドに共有結
合し、抗−ＲＳＶ Ｆペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびｚは、０および
１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の整数から独立して選択される員であり；
ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨおよびグリコシル残基、複合糖質および修飾基から選択される員である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）抗−ＲＳＶ Ｆペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結
合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾され
たグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触さ
せることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、抗−ＲＳＶ Ｆペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼお
よびガラクトース供与体と、ガラクトースを抗−ＲＳＶ Ｆペプチドへ転移させるために
適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ｂ）の前に、抗−ＲＳＶ Ｆペプチドをエンドグリカナーゼと、抗−ＲＳＶ
Ｆペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含ん
でなる。

好適な態様において、および上に提示した抗−ＲＳＶ Ｆペプチドの式に関して、ａ、
ｃ、ｅ、ｇおよびｉが、０および１から独立して選択される員であり；ｒおよびｔが１で
あり；ｂ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；
そしてｚが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、
ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙが０であり；ｉおよびｐが０または１から独立して選択され
；ｑおよびｚが１であり；そしてｎが０である。あるいはｅ、ｇ、ｉ、ｒおよびｔが０お
よび１から独立して選択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ
、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｑおよびｚが１である。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

また提供するのは、上記の方法により形成された抗ＲＳＶ Ｆペプチド結合物である。

また提供するのは、抗−ＣＤ２０抗体ペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法
であり、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して抗−ＣＤ２０抗体ペプチドに共
有結合し、抗−ＣＤ２０抗体ペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびｚは、０および１か
ら独立して選択される整数であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の整数から独立して選択され；
ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、複合糖質または修飾基から選択される員である、
を含んでなるグリコシルサブユニットを有する。この方法は：
（ａ）抗−ＣＤ２０抗体ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有
結合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾さ
れたグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、抗−ＣＤ２０抗体ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼ
およびガラクトシル供与体と、ガラクトシル供与体を抗−ＣＤ２０抗体ペプチドへ転移さ
せるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ｂ）の前に、抗−ＣＤ２０抗体ペプチドをエンドグリカナーゼと、抗−ＣＤ
２０抗体ペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、抗−ＣＤ２０抗体ペプチドをマンノシダーゼと、抗−ＣＤ２０
抗体ペプチドからマンノースを除去するために適する条件下で接触させることを含んでな
る。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

別の観点では、グリコシルトランスフェラーゼがガラクトシルトランスフェラーゼであ
り、そして修飾されたグリコシル供与体が修飾されたガラクトシル供与体である。

好適な態様において、そして上記に提示した抗−ＣＤ２０抗体ペプチドの式に関して、
ａ、ｃ、ｅ、ｇおよびｉが０および１から独立して選択される員であり；ｒ、ｔ、ｑおよ
びｚが１であり；そしてｂ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよ
びｙが０である。あるいはａ、ｃ、ｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが、０および１から独立
して選択される員であり；ｂ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙが
０であり；そしてｚが１である。あるいはｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０および１から
独立して選択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、
ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｚが１である。あるいはｉが０または１であり；
ｑおよびｚが１であり；そしてａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、
ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはｅ、ｇ、ｉ、ｒ、ｔ、ｖ、ｘ
およびｚが０および１から独立して選択される員であり；ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、
ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｕ、ｗおよびｙが０であり；そしてｚが１である。あるいはａ、ｂ
、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０
であり；ｎおよびｑが１であり；そしてｉが０または１である。

また上記の方法により形成された抗−ＣＤ２０抗体ペプチド結合物を含む。

加えて本発明は、組換えＤＮａｓｅペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法を
提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して組換えＤＮａｓｅペプチドに共
有結合し、組換えＤＮａｓｅペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独立して選
択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であり；
ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；そして
Ｒはポリマー、複合糖質、マンノース、オリゴマンノースおよび修飾基から選択される
員である、
を有するグリコシル残基を含んでなり、該方法が
（ａ）組換えＤＮａｓｅペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有
結合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾さ
れたグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触
させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、組換えＤＮａｓｅペプチドをシアリダーゼと、組換えＤＮａｓ
ｅペプチドからシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、組換えＤＮａｓｅペプチドを、ガラクトシルトランスフェラー
ゼおよびガラクトース供与体と、ガラクトースを組換えＤＮａｓｅペプチドへ転移させる
ために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、組換えＤＮａｓｅペプチドをグリコシダーゼおよびシアリダー
ゼの組み合わせと接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｆ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

この方法はまた：
（ｇ）工程（ａ）の前に、組換えＤＮａｓｅペプチドをＮ−アセチルグルコサミントラン
スフェラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃを該組換えＤＮａｓｅペプチド
へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

加えて、この方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、組換えＤＮａｓｅペプチドをエンドグリカナーゼと、組換えＤ
Ｎａｓｅペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

好適な態様において、および上記に提示したＤＮａｓｅペプチドの式に関して、ａ、ｂ
、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して選
択される員であり；ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびｐが１であり；そしてｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙ
が０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｑ、ｒ、
ｓ、ｔおよびｕが、０および１から独立して選択される員であり；ｐが１であり；そして
ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ
、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｅ、ｇ、ｉ、ｑ、ｒおよびｔが０およ
び１から独立して選択される員であり；そしてｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、
ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり
；ｉが０または１であり；そしてｐが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、
ｈ、ｊ、ｋ、ｌおよびｍが０であり；ｉ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｘおよびｙが０およ
び１から独立して選択される員であり；ｐが１であり：そしてＲがマンノースまたはオリ
ゴマンノースである。

また上記の方法により形成された組換えＤＮａｓｅペプチド結合物も提供する。

本発明はさらに、抗−腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）アルファペプチドと修飾基との間に結合
物を形成する方法を含み、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して抗ＴＮＦアル
ファペプチドに共有結合し、抗−ＴＮＦアルファペプチドが式：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびｚは、０および１から独
立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から２０の間の整数から独立して選択される員であり；
ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；そして
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；
Ｒ'は複合糖質または修飾基である、
を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）抗−ＴＮＦアルファペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共
有結合したグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾
されたグリコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接
触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、抗−ＴＮＦアルファペプチドをガラクトシルトランスフェラー
ゼおよびガラクトース供与体と、ガラクトースを抗−ＴＮＦアルファペプチドへ転移させ
るために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の前に、抗−ＴＮＦアルファペプチドをエンドグリカナーゼと、抗−Ｔ
ＮＦアルファペプチドからグリコシル部分を開裂するために適する条件下で接触させるこ
とを含んでなる。

１つの態様では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記に提示した抗−ＴＮＦアルファペプチドの式に関して
、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよ
びｕが、０および１から独立して選択される員であり；ｎが１であり；そしてｖ、ｗ、ｘ
、ｙおよびｚが０である。あるいはａ、ｃ、ｅ、ｇおよびｉが０および１から独立して選
択される員であり；ｒおよびｔが１であり；ｂ、ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、
ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙ；そしてｑおよびｚが１である。

また上記の方法により形成された抗−ＴＮＦアルファペプチド結合物を含む。

また本発明は、インスリンペプチドと修飾基との間に結合物を形成する方法も提供し、
ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して糖ペプチドに共有結合し、該糖ペプチド
が：

式中、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｚ、ａａ、ｂｂ、ｃｃおよび
ｅｅは、０および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の間の整数から独立して選択される員であり；
ｄｄ、ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、修飾基および複合糖質から選択される員である、
から選択される員である、式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）糖ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合した該グリ
コシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシ
ル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを
含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、糖ぺプチドをシアリダーゼと、糖ペプチドからシアル酸を除去
するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物を、シアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シ
アル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、糖プチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼおよ
びＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下で
接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分および複合糖
質から選択される員である。

好適な態様において、および上記に提示したインスリンペプチドの式に関して、ａ、ｂ
、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から
独立して選択される員であり；ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｚが１である
。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ
、ｘおよびｙが０であり；ｉおよびｒが０および１から独立して選択される員であり；そ
してｚが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍおよ
びｎが０であり；ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０および１から独立して選択さ
れる員であり；ｚが１である。あるいはａａ、ｂｂ、ｃｃおよびｅｅが０および１から独
立して選択される員であり；そしてｄｄが０である。あるいはａａおよびｅｅが０および
１から独立して選択される員であり；そしてｂｂ、ｃｃおよびｄｄが０である。ａａ、ｂ
ｂ、ｃｃ、ｄｄおよびｅｅが０である。

本発明はさらに、上記の方法により形成されたインスリンペプチド結合物を含む。

加えて本発明では、Ｂ型肝炎表面抗原（ＨＢｓＡｇ）ペプチドと修飾基との間に結合物
を形成する方法が提供され、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介してＨＢｓＡｇ
ペプチドに共有結合し、ＨＢｓＡｇペプチドが：

ここで、
ａａ、ｂｂ、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｎ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕは、０および１から独
立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から６の間の整数から独立して選択される員であり；
ｏ、ｐ、ｊ、ｋ、ｌおよびｍは０から１００の間の整数から独立して選択される員であ
り；
ｃｃ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、またはグリコシル残基、複合糖質、または修飾基である、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。

この方法は：
（ａ）ＨＢｓＡｇペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合し
たグリコシルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグ
リコシル供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させる
ことを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、ＨＢｓＡｇペプチドをシアリダーゼと、ＨＢｓＡｇペプチドか
らシアル酸を除去するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、ＨＢｓＡｇペプチドをガラクトシダーゼと、ＨＢｓＡｇペプチ
ドからグリコシル残基を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

この方法は：
（ｅ）工程（ａ）の前に、ＨＢｓＡｇペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよび
ガラクトース供与体と、ガラクトースをＨＢｓＡｇペプチドへ転移させるために適する条
件下で接触させることを含んでなる。

加えて、この方法は：
（ｆ）工程（ｄ）の生成物を、ＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体と、シアル酸を生成
物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

またこの方法は：
（ｇ）工程（ａ）からの生成物を修飾基に反応する部分と接触させ、これにより完全なグ
リコシル連結基と部分との間に結合物を形成することを含んでなる。

またこの方法は：
（ｈ）工程（ａ）の前に、ＨＢｓＡｇペプチドをＮ−アセチルグルコサミントランスフェ
ラーゼおよびＧｌｃＮＡｃ供与体と、ＧｌｃＮＡｃをＨＢｓＡｇペプチドへ転移させるた
めに適する条件下で接触させることを含んでなる。

加えて、この方法は：
（ｉ）工程（ａ）の前に、ＨＢｓＡｇペプチドをマンノシダーゼと、ＨＢｓＡｇペプチド
からマンノースを開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

またこの方法は：
（ｊ）工程（ａ）の前に、ＨＢｓＡｇペプチドをエンドグリカナーゼと、ＨＢｓＡｇペプ
チドからグリコシル基を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの観点では、修飾基はポリマー、トキシン、放射性同位体、治療部分、アジュバン
トおよび複合糖質から選択される員である。

好適な態様において、および上記に提示したＨＢｓＡｇペプチドの式に関して、ａ、ｂ
、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびａａが、０および１
から独立して選択される員であり；ｂｂ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびｎが１であり；そしてｃ
ｃ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ
、ｎ、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびａａが、０および１から独立して選択される員
であり；ｅ、ｆ、ｇおよびｈが０、１、２、３または４から独立して選択され；ｃｃ、ｖ
、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０であり；そしてｂｂが１である。あるいはｃｃ、ａ、ｂ、ｃ、
ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、ｐ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０で
あり；そしてｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびａａが０および１から独立して
選択される員であり；そしてｂｂが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ
、ｍ、ｏ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕおよびａａが０および１から独立して選択される員であり
；ｂｂ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈおよびｎが１であり；そしてｎ、ｐ、ｃｃ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよ
びｚが０である。あるいはｂｂ、ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ
、ｏ、ｐ、ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｚが０および１から独立して選択
される員であり；ｃｃが１であり；そしてｎが０または１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、
ｄ、ｆ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｏ、ｐ、ｓ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙ、ｚおよびｃｃが０であ
り；ｂｂが１であり；ｅ、ｇ、ｉ、ｎ、ｑ、ｒ、ｔおよびａａが０および１から独立して
選択される員である。ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｏ、
ｐ、ｚおよびｃｃが０であり；ｑ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびａａが０およ
び１から独立して選択される員であり；そしてｂｂが１である。

また、上記の方法により形成されたＨＢｓＡｇペプチド結合物も含む。

本発明はさらに、ヒト成長ホルモン（ＨＧＨ）ペプチドと修飾基との間に結合物を形成
する方法を提供し、ここで修飾基が完全なグリコシル連結基を介して糖ペプチドに共有結
合し、糖ペプチドが：

ここで、
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｚ、ａａ、ｂｂ、ｃｃおよび
ｅｅは、０および１から独立して選択される員であり；
ｅ、ｆ、ｇおよびｈは０から４の間の整数から独立して選択される員であり；
ｎ、ｖ、ｗ、ｘ、ｙおよびｄｄは０であり；
Ｒは修飾基、マンノースまたはオリゴマンノースであり；そして
Ｒ'はＨ、グリコシル残基、修飾基および複合糖質から選択される員である、
から選択される員である式を有するグリコシル残基を含んでなる。この方法は：
（ａ）糖ペプチドを、グリコシルトランスフェラーゼおよび修飾基に共有結合したグリコ
シルトランスフェラーゼの基質であるグリコシル部分を含んでなる修飾されたグリコシル
供与体と、完全なグリコシル連結基が形成するために適する条件下で接触させることを含
んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｂ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをシアリダーゼと、糖ペプチドからシアル酸を除去
するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

１つの態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをエンドグリカナーゼと、糖ペプチドからグリコシ
ル部分を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

別の態様では、この方法は：
（ｃ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクト
ース供与体と、ガラクトースを糖ペプチドへ転移させるために適する条件下で接触させる
ことを含んでなる。

さらに別の態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の生成物をシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体と、シア
ル酸を生成物へ転移させるために適する条件下で接触させることを含んでなる。

さらなる態様では、この方法は：
（ｄ）工程（ａ）の前に、糖ペプチドをガラクトシダーゼと、糖ペプチドからグリコシル
残基を開裂するために適する条件下で接触させることを含んでなる。

好適な態様において、および上記に提示するＨＧＨペプチドの式に関して、ａ、ｂ、ｃ
、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｒ、ｓ、ｔおよびｕが０および１から独立
して選択される員であり；ｎ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０であり；そしてｚが１である。あ
るいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍ、ｎ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘ
およびｙが０であり；ｉおよびｒが０および１から独立して選択される員であり；そして
ｚが１である。あるいはａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅ、ｆ、ｇ、ｈ、ｉ、ｊ、ｋ、ｌ、ｍおよびｎ
が０であり；ｒ、ｓ、ｔ、ｕ、ｖ、ｗ、ｘおよびｙが０および１から独立して選択される
員であり；そしてｚが１である。あるいはａａおよびｅｅが０および１から独立して選択
される員であり；そしてｂｂ、ｃｃおよびｄｄが０である。あるいはａａ、ｂｂ、ｃｃ、
ｄｄおよびｅｅが０である。あるいはａａ、ｂｂ、ｃｃ、ｄｄ、ｅｅおよびｎが０である
。

また上記の方法により形成されたＨＧＨペプチド結合物も含む。
発明の詳細な記述
本発明は、特別にカスタマイズされた、または所望のグリコシル化パターンを有する糖
ペプチド分子を提供する様式で、ペプチド分子に、またはペプチド分子から糖を無細胞で
インビトロ付加および／または削除するための方法および組成物を含み、ここで糖ペプチ
ドは工業的規模で生産される。本発明の好適な態様では、そのように生産された糖ペプチ
ドは酵素反応を介してペプチドに付加された修飾糖が糖ペプチドに結合している。本発明
の重要な特徴は、任意の細胞型により生産されるペプチドを取り、そしてペプチド上にコ
アグリカン構造を生成し、その後にグリカン構造をインビトロで改造して、哺乳動物の治
療的使用に適するグリコシル化パターンを有する糖ペプチドを生成するように改造するこ
とである。より具体的には、結合分子がペプチドに有利な特性を付与するように、本発明
に従い修飾された糖分子またはそれに結合した他の化合物を有する糖ペプチド分子を調製
することが可能である。本発明により、結合分子のペプチドへの酵素に基づく付加は位置
選択性および立体選択性の利点を有するので、結合分子はペプチドに酵素的に付加される
。したがって本明細書に提供する方法および組成物を使用することにより、ペプチドを改
造して好ましくはペプチドに結合した修飾された糖を有する望ましいグリカン構造をペプ
チドに付与することが可能である。また本発明の方法および組成物を使用することにより
、工業的規模で所望する、かつまたは修飾されたグリカン構造を有するペプチド分子を生
成することも可能であり、これにより初めて当該技術分野に改善された治療用ペプチドを
効率的に生産するための現実的解決を提供する。
定義
他に定義しない限り、本明細書で使用するすべての技術でおよび科学的用語は、一般に
本発明が属する分野で当業者が普通に理解している意味と同じ意味を有する。一般に細胞
培養、分子遺伝学、有機化学、および核酸化学およびハイブリダイゼーションで本明細書
で使用する命名法および研究手順は、当該技術分野において周知なものであり、そして普
通に使用されている。核酸およびペプチド合成については標準的な技術を使用する。これ
らの技法および手順は当該技術分野の常法および様々な一般的参考書（例えばＳａｍｂｒ
ｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，１９８９，モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュ
アル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ
）、第２版、コールドスプリングハーバーラボラトリー出版、コールドスプリングハーバ
ー、ニューヨーク州）に従い一般に行われ、これらはこの文献全体にわたって提供されて
いる。本明細書で使用する命名法および以下に記載する分析化学および有機合成で使用す
る研究手順は周知で、しかも当該技術分野では普通に使用されているものである。標準技
法およびそれらの変法を、化学合成および化学分析に使用する。

本明細書で使用する冠詞"ａ"および"ａｎ"は１以上（すなわち少なくとも１）の物
体の文法的対象を指す。例として"要素（ａｎ ｅｌｅｍｅｎｔ）"は１または１より多
くの要素を指す。

本明細書で使用する用語「抗体」は、抗原上の特異的エピトープに特異的に結合するこ
とができる免疫グロブリン分子を称する。抗体は天然な供給源または組換え源に由来する
完全な免疫グロブリンであることができ、そして完全な免疫グロブリンの免疫反応性部分
であることができる。抗体は典型的には四量体の免疫グロブリン分子である。本発明にお
ける抗体は、例えばポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、Ｆｖ、ＦａｂおよびＦ（
ａｂ）_２、ならびに一本鎖抗体およびヒト化抗体を含む種々の形態で存在することができ
る（Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．、１９９９、抗体を使用して：ア ラボラトリーマニュ
アル（Ｕｓｉｎｇ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）
、コールドスプリングハーバーラボラトリー出版、ニューヨーク州；Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ
ａｌ．、１９８９、抗体：ア ラボラトリーマニュアル（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ
Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク；
Ｈｏｕｓｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，１９８８，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ
ＳＡ８５：５８７９−５８８３；Ｂｉｒｄ ｅｔ ａｌ．，１９８８，Ｓｃｉｅｎｃｅ２
４２：４２３−４２６）。

本明細書で使用する用語「合成抗体」は、例えば本明細書に記載するバクテリオファー
ジにより発現される抗体のような組換えＤＮＡ技術を使用して生成される抗体を意味する
。この用語は抗体をコードするＤＮＡ分子の合成により生成された抗体を意味するとも解
釈すべきであり、そしてこのＤＮＡ分子は抗体タンパク質または抗体を特定するアミノ酸
配列を発現し、ここでＤＮＡまたはアミノ酸配列は当該技術分野で利用可能であり、しか
も周知な合成ＤＮＡまたはアミノ酸配列技法を使用して既に得られている。

本明細書で使用する「機能的な」生物学的分子は、特徴とする特性を現す形態の生物学
的分子である。例えば機能的酵素は、その酵素の特徴とする特徴的な触媒活性を示すもの
である。

本明細書で使用する構造

は、ペプチド中のアミノ酸とグリカン構造との間の連結点である。

「Ｎ−結合」オリゴ糖は、アスパラギン−Ｎ−アセチルグルコサミン結合によりアスパ
ラギンを介してペプチド骨格に連結しているオリゴ糖である。Ｎ−結合オリゴ糖は「Ｎ−
グリカン」とも呼ぶ。すべてのＮ−結合オリゴ糖は共通するＭａｎ_３ＧｌｃＮＡｃ_２の五
糖コアを有する。それらはＮ−アセチルグルコサミン、ガラクトース、Ｎ−アセチルガラ
クトサミン、フコースおよびシアル酸のような周辺糖の存在および分岐（アンテナとも呼
ぶ）の数が異なる。場合によりこの構造はコアのフコース分子および／またはキシロース
分子を含んでもよい。

「基本的なトリマンノシルコア構造」とは、さらなる糖は結合していないトリマンノシ
ルコア構造のみから構成されるグリカン部分を称する。用語「基本的な」が「トリマンノ
シルコア構造」の記載に含まれない時、グリカンはグリカンはそれに結合したさらなる糖
を持つトリマンノシルコア構造を構成する。場合によりこの構造はコアフコース分子およ
び／またはキシロース分子を含んでもよい。

用語「基本的なトリマンノシルコア糖ペプチド」は、本明細書では主に基本的なトリマ
ンノシルコア構造から構成されるグリカン構造を有する糖ペプチドを指すために使用する
。場合によりこの構造はコアフコース分子および／またはキシロース分子を含んでもよい
。

「Ｏ−結合」オリゴ糖は、トレオニンまたはセリンの介してペプチド骨格に結合したオ
リゴ糖である。

本明細書に記載するすべてのオリゴ糖は、非還元サッカリド（すなわちＧａｌ）に関す
る名前および記号で記載し、次にグリコシド結合の立体配置（αまたはβ）、環結合（１
または２）、結合に関与する還元サッカリドの環の位置（２、３、４、６または８）、そ
して次に還元サッカリドの名前または記号（すなわちＧｌｃＮＡｃ）を記載する。各サッ
カリドは好ましくはピラノースである。標準的な糖生物学命名法に関する総説は、例えば
糖生物学の本質（Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｆ Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ）、Ｖａｒｋｉ
ｅｔ ａｌ．，編集、１９９９、ＣＳＨＬ出版を参照にされたい。

用語「シアル酸」は、９−炭素カルボキシル化糖のファミリーの任意の員を指す。シア
ル酸ファミリーの最も普通の員は、Ｎ−アセチル−ノイラミン酸（２−ケト−５−アセト
アミド−３，５−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクトノヌロピラノソ−１−ン酸（
しばしばＮｅｕ５Ａｃ、ＮｅｕＡｃまたはＮＡＮＡと略記される）。このファミリーの第
２の員は、Ｎ−グリコリル−ノイラミン酸（Ｎｕｅ５ＧｃまたはＮｅｕＧｃ）であり、こ
こでＮｅｕＡｃのＮ−アセチル基はヒドロキシル化されている。第３のシアル酸ファミリ
ーの員は、２−ケト−３−デオキシ−ノヌロン酸（ＫＤＮ）である（Ｎａｄａｎｏ ｅｔ
ａｌ．，（１９８６）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６１：１１５５０−１１５５７；Ｋ
ａｎａｍｏｒｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：２１８１１−２１８
１９（１９９０））。また含まれるのは９−Ｏ−Ｃ_１−Ｃ_６アシル−Ｎｅｕ５Ａｃ様の９
−Ｏ−ラクチル−Ｎｅｕ５Ａｃまたは９−Ｏ−アセチル−Ｎｅｕ５Ａｃ、９−デオキシ−
９−フルオロ−Ｎｅｕ５Ａｃおよび９−アジド−９−デオキシ−Ｎｅｕ５Ａｃのような９
−置換シアル酸である。シアル酸ファミリーの総説については、例えばＶａｒｋｉ，Ｇｌ
ｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，２：２５−４０（１９９２）；シアル酸：化学、代謝および機能
（Ｓｉａｌｉｃ Ａｃｉｄ：Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ Ｆｕ
ｎｃｔｉｏｎ）、Ｒ．Ｓｃｈａｕｅｒ、編集（スプリンガーファーラーグ、ニューヨーク
（１９９２））を参照にされたい。シアリル化手順におけるシアル酸化合物の合成および
使用は、１９９２年、１０月１日に公開された国際公開第９２／１６６４０号パンフレッ
トに開示されている。

本明細書で使用する「所望のグリコシル化」を有するペプチドは、ペプチドの効率的な
生物学的活性に必要な１以上のオリゴ糖分子を含んでなるペプチドである。

「疾患」は、動物が恒常性を維持することができず、そして疾患が改善されなければ、
動物の健康状態は悪化し続ける動物の健康状態である。

患者にペプチド薬剤を投与する内容において、本明細書で使用する「曲線下の面積」ま
たは「ＡＵＣ」は、ゼロから無限大の時間の関数として患者の全身循環における薬剤濃度
を記載する曲線下の総面積と定義する。

患者にペプチド薬剤を投与する内容において、本明細書で使用する「半減期」または「
ｔ^１／_２」は、患者の血漿薬剤濃度が半分に減少するために必要な時間と定める。多くの
排除（ｃｌｅａｒｅｎｃｅ）メカニズム、再分布および当該技術分野で周知な他のメカニ
ズムに依存して、ペプチド薬剤に関連する１より多くの半減期が存在するかもしれない。
通常、アルファ期が再分布に関連し、そしてベータ期が排除に関連するような、アルファ
およびベータ半減期が定義されている。しかしタンパク質薬剤については、ほとんどの部
分が血流に限定され、少なくとも２つの排除半減期が存在し得る。幾つかのグリコシル化
ペプチドに関しては、急速なベータ期排除はマクロファージ上のレセプター、あるいは末
端ガラクトース、Ｎ−アセチルガラクトサミン、Ｎ−アセチルグルコサミン、マンノース
またはフコースを認識する内皮細胞を介して媒介される。より遅いベータ期排除は有効半
径（ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｒａｄｉｕｓ）＜２ｎｍ（約６８ｋＤ）の分子については腎臓
の糸球体濾過を介して、および／または組織中の特異的もしくは非特異的取り込みおよび
代謝を介して起こり得る。糖ＰＥＧ化（ＧｌｙｃｏＰＥＧｙｌａｔｉｏｎ）は末端糖（例
えばガラクトースまたはＮ−アセチルガラクトサミン）をキャップすることができ、そし
てこれによりこれらの糖を認識するレセプターを介する急速なアルファ期排除を遮断する
。より大きな有効半径を与え、そしてこれにより分布の容量および組織の取り込みを下げ
、これにより後期ベータ期を延長することもできる。このようにアルファ期およびベータ
期半減期に及ぼす糖ＰＥＧ化の明確な影響は、サイズ、グリコシル化の状態および当該技
術分野で周知な他のパラメーターに依存して変動するだろう。「半減期」のさらなる説明
は、製薬学的バイオテクノロジー（Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏ
ｌｏｇｙ）、（１９９７，ＤＦＡ Ｃｒｏｍｍｅｌｉｎ ａｎｄ ＲＤ Ｓｉｎｄｅｌａ
ｒ、編集、ハウウッド出版、アムステルダム、第１０１−１２０頁）に見いだすことがで
きる。

患者にペプチド薬剤を投与する内容において、本明細書で使用する用語「滞留時間」と
は、薬剤が投薬後に患者の身体に留まる平均時間と定義する。

「単離された核酸」とは天然に存在する状態でそれを挟む配列、例えばフラグメントに
通常隣接する配列から取り出されたＤＮＡフラグメント、例えば天然に存在するゲノム中
のフラグメントに隣接する配列から分離された核酸セグメントまたはフラグメントを称す
る。この用語は、核酸に天然に付随する他の成分、例えば通常は細胞中で付随するＲＮＡ
またはＤＮＡまたはタンパク質から実質的に精製された核酸にも適用する。したがってこ
の用語には、例えばベクターに、自律複製プラスミドまたはウイルスに、または原核また
は真核生物のゲノムＤＮＡに包含されるか、または他の配列から独立して別個の分子とし
て存在する（ｃＤＮＡまたはゲノムもしくはＰＣＲまたは制限酵素消化により生成される
ｃＤＮＡフラグメントのような）組換えＤＮＡを含む。またさらなるペプチド配列をコー
ドするハイブリッド核酸の一部である組換えＤＮＡも含む。

「ポリヌクレオチド」は、核酸の一本鎖またはパラレルおよび抗−パラレル鎖を意味す
る。すなわちポリヌクレオチドは一本鎖または二本鎖核酸のいずれかでよい。

用語「核酸」は典型的には大きなポリヌクレオチドを称する。用語「オリゴヌクレオチ
ド」は典型的には短いポリヌクレオチド、一般には約５０ヌクレオチド未満を指す。

本明細書では従来の表記法を使用してポリヌクレオチド配列を記載する：一本鎖ポリヌ
クレオチド配列の左手末端は５'−末端である；２本鎖ポリヌクレオチド配列の左手方向
は、５'−方向を指す。新生ＲＮＡ転写物に対してヌクレオチドの５'から３'付加の方
向は転写方向と称する。ｍＲＮＡと同じ配列を有するＤＮＡ鎖を「コード鎖」と称し；Ｄ
ＮＡ上の参照点に対して５'に位置するＤＮＡ鎖上の配列は「上流配列」と称し；ＤＮＡ
上の参照点に対して３'に位置するＤＮＡ鎖上の配列は「下流配列」と称する。

「コードする」とは、ヌクレオチド（すなわち、ｒＲＮＡ、ｔＲＮＡおよびｍＲＮＡ）
の定めた配列、またはアミノ酸の定めた配列およびそれらから生じる生物学的特性のいず
れかを有する、生物学的プロセスにおける他のポリマーおよび高分子を合成するための鋳
型として役立つ遺伝子、ｃＤＮＡまたはｍＲＮＡのようなポリヌクレオチド中のヌクレオ
チドの特別な配列に固有の特性を称する。すなわち核酸配列は、その核酸に対応するｍＲ
ＮＡの転写および翻訳が、細胞または他の生物系であるタンパク質を生産する場合、その
タンパク質をコードする。両コード鎖は、そのヌクレオチド配列がｍＲＮＡ配列と同一で
あり、そして通常は配列表に提供され、そして遺伝子またはｃＤＮＡの転写に鋳型として
使用される非コード鎖は、その核酸またはｃＤＮＡのタンパク質または他の産物をコード
すると言うことができる。

他に特定しない限り、「アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列」は互いの縮重形
物であり、そして同じアミノ酸配列をコードするすべてのヌクレオチド配列を含む。タン
パク質およびＲＮＡをコードするヌクレオチド配列はイントロンを含んでもよい。

本明細書で使用する「相同的」とは２つの重合性分子の間、例えば２つの核酸分子の間
、例えば２つのＤＮＡ分子または２つのＲＮＡ分子の間、または２つのペプチド分子の間
のサブユニット配列類似性を称する。２つの両分子中のサブユニット位置が同じモノマー
性サブユニットに占有されている時、例えば２つの各ＤＮＡ分子の１つの位置がアデニン
で占められているならば、それらはその位置で相同的である。２つの配列間の相同性は対
合するか、または相同的な位置の数の直接的関数であり、例えば２つの化合物の配列で位
置の半分（例えば１０個のサブユニット長のポリマー中の５箇所）が相同的ならば、２つ
の配列は５０％相同的であり、９０％の位置、例えば１０のうちの９が対合または相同的
ならば、２つの配列は９０％の相同性を共有する。例として、ＤＮＡ配列３'ＡＴＴＧＣ
Ｃ５'および３'ＴＡＴＧＧＣは５０％の相同性を共有する。

本明細書で使用するように、「相同性」は「同一性」と同義的に使用する。

２つのヌクレオチドまたはアミノ酸配列間の同一性の割合の決定は、数学的アルゴリズ
ムを使用して行うことができる。例えば２つの配列を比較するために有用な数学的アルゴ
リズムは、Ｋａｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９３，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．
Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：５８７３−５８７７）におけるように改良されたＫａ
ｒｌｉｎ ａｎｄ Ａｌｔｓｃｈｕｌ（１９９０，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃ
ｉ．ＵＳＡ ８７：２２６４−２２６８）のアルゴリズムである。このアルゴリズムはＡ
ｌｔｓｃｈｕｌ，ｅｔ ａｌ．（１９９０，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４
１０）のＮＢＬＡＳＴおよびＸＢＬＡＳＴプログラムに包含され、そして例えばホームペ
ージのＵＲＬ"ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ
／"を有するナショナル センター フォー バイオテクノロジー インフォメーション
（ＮＣＢＩ）の世界的なウェッブサイトからアクセスすることができる。ＢＬＡＳＴのヌ
クレオチド調査は、以下のパラメーターを使用してＮＢＬＡＳＴプログラムを用いて行う
ことができる（ＮＣＢＩウェッブサイトで"ｂｌａｓｔｎ"と命名）：本明細書に記載す
る核酸に対して相同的なヌクレオチド配列を得るために、ギャップペナルティー＝５；ギ
ャップエクステンションペナルティー＝２；ミスマッチペナルティー＝３；マッチリワー
ド＝１；期待値＝１０．０；およびワードサイズ＝１１。ＢＬＡＳＴのタンパク質調査は
、以下のパラメーターを使用してＸＢＬＡＳＴプログラム（ＮＣＢＩウェッブサイトで"
ｂｌａｓｔｎ"と命名）またはＮＣＢＩ"ｂｌａｓｔｐ"プログラムを用いて行うことが
できる：本明細書に記載するタンパク質分子に対して相同的なアミノ酸配列を得るために
、期待値＝１０．０、ＢＬＯＳＵＭ６２スコアリングマトリックス。比較目的のギャップ
化アライメントを得るために、Ｇａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴをＡｌｔｓｃｈｕｌ，ｅｔ ａ
ｌ．（１９９７，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２５：３３８９−３４０２）に
記載されているように利用することができる。あるいはＰＳＩ−ＢｌａｓｔまたはＰＨＩ
−Ｂｌａｓｔを使用して、分子間の距離関係（Ｉｄ．）および共通パターンを共有する分
子間の関係を検出する反復調査を行うことができる。ＢＬＡＳＴ、Ｇａｐｐｅｄ化ＢＬＡ
ＳＴ、ＰＳＩ−ＢｌａｓｔおよびＰＨＩ−Ｂｌａｓｔプログラムを使用する時、各プログ
ラムのデフォルトパラメーター（例えばＸＢＬＡＳＴおよびＮＢＬＡＳＴ）を使用するこ
とができる。ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ．を参照にされ
たい。

２つの配列間の同一性の割合は、ギャップを割り当てるか、または割り当てずに上記の
技術に類似する技術を使用して決定することができる。同一性の割合の計算では、多くの
場合、正確な対合をカウントする。

ペプチドをコードする「ヘテロロガスな核酸発現単位」は、プロモーターおよび／また
はリプレッサー配列（ここで少なくとも１つの配列はヘテロロガス、すなわち宿主細胞中
に通常は見いだされない）のような１以上の発現制御配列に操作可能に連結された、問題
のペプチドのコード配列を有する核酸と定義する。

２つのポリヌクレオチドが「操作可能に連結された」と記載することは、一本鎖または
二本鎖核酸部分が、２つのポリヌクレオチドの少なくとも１つがその特徴とする生理学的
効果をもう一方に及ぼすことができる様式で、核酸部分内に配列されている２つのポリヌ
クレオチドを含んでなることを意味する。例として核酸のコード領域と操作可能に連結さ
れたプロモーターは、コード領域の転写を促進することができる。

本明細書で使用する用語「プロモーター／調節配列」は、プロモーター／調節配列に操
作可能に連結された遺伝子産物の発現に必要な核酸配列を意味する。ある場合ではこの配
列はコアプロモーター配列でよく、そして他の場合ではこの配列は遺伝子産物の発現に必
要なエンハンサー配列および他の調節要素を含んでもよい。プロモーター／調節配列は、
例えば組織特異的様式で遺伝子産物を発現するものであり得る。

「構成的プロモーターは、それが操作可能に連結された遺伝子の発現を細胞中で一定の
様式で駆動するプロモーターである。例として、細胞のハウスキーピング遺伝子の発現を
駆動するプロモーターは構成的プロモーターである。

「誘導性」プロモーターは、遺伝子産物をコードするか、または特定するポリヌクレオ
チドに操作可能に連結された時、プロモーターに対応するインデューサーが細胞に存在す
る時にのみ生きている細胞中で遺伝子産物の生産を実質的に引き起こすヌクレオチド配列
である。

「組織−特異的」プロモーターは、遺伝子産物をコードするか、または特定するポリヌ
クレオチドに操作可能に連結された時、細胞がプロモーターに対応する組織型の細胞であ
る時にのみ生きている細胞中で遺伝子産物の生産を実質的に引き起こすヌクレオチド配列
である。

「ベクター」は、単離された核酸を含んでなり、そして単離された核酸を細胞の内部へ
送達するために使用することができる物質の組成物である。当該技術分野では数々のベク
ターが知られており、それらには限定するわけではないが線状ポリヌクレオチド、イオン
性または両イオン性化合物を付随するポリヌクレオチド、プラスミドおよびウイルスを含
む。このように用語「ベクター」には自律複製プラスミドまたはウイルスを含む。この用
語は、例えばポリリシン化合物、リポソーム等のような核酸の細胞への転移を促進する非
−プラスミドおよび非−ウイルス化合物を含むと解釈されるべきである。ウイルスベクタ
ーの例には、限定するわけではないがアデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベク
ター、レトロウイルスベクター等を含む。

「発現ベクター」は発現されるべきヌクレオチド配列に操作可能に連結された発現制御
配列を含んでなる組換えポリヌクレオチドを含んでなるベクターを称する。発現ベクター
は発現に十分なシス−作用要素を含んでなり；発現のための他の要素は宿主細胞またはイ
ンビトロ発現系により供給され得る。発現ベクターには、組換えポリヌクレオチドを包含
するコスミド、プラスミド（例えば裸の、またはリポソームに含まれた）およびウイルス
のような、当該技術分野で既知のこれらすべてを含む。

「遺伝的に操作された」または「組換え」細胞は、細胞の遺伝的物質に対して１以上の
修飾を有する細胞である。そのような修飾には限定するわけではないが、遺伝的物質の挿
入、遺伝的物質の削除、およびそのような物質が安定に維持さるか、またはされなくても
染色体外の遺伝的物質の挿入に見られる。

「ペプチド」はオリゴペプチド、ポリペプチド、ペプチド、タンパク質または糖タンパ
ク質である。本明細書における用語「ペプチド」の使用は、糖部分がペプチドに結合して
いる時、ペプチドに結合した糖部分を有するペプチドを含む。

本明細書で使用する「天然の形態」は、天然に見いだされる、細胞および／または生物
により生産される時のペプチドの形態を意味する。ペプチドが複数の細胞および／または
生物により生産される時、ペプチドは種々の天然な形態を有することができる。

「ペプチド」は、モノマーがアミノ酸であり、そしてアミド結合を介して一緒に連結さ
れているポリマーを称するか、あるいはペプチドと呼ぶ。さらに天然には存在しないアミ
ノ酸、例えばβ−アラニン、フェニルグリシンおよびホモアルギニンも含む。核酸がコー
ドしないアミノ酸も本発明で使用することができる。さらに反応性基、グリコシル化部位
、ポリマー、治療部分、生体分子等を含むように修飾されたアミノ酸も本発明に有用とな
り得る。本発明で使用するすべてのアミノ酸は、そのＤ−またはＬ−同位体のいずれかで
あり得る。Ｌ−同位体が一般に好ましい。さらに他のペプチド模造物も本発明に有用であ
る。本明細書で使用するように、「ペプチド」はグリコシル化および非グリコシル化ペプ
チドの両方を指す。またペプチドを発現する系により不完全にグリコシル化されたペプチ
ドも含む。一般的な総説については、Ｓｐａｔｏｌａ，Ａ．Ｆ．、アミノ酸、ペプチドお
よびタンパク質の化学および生化学（ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ ＡＮＤ ＢＩＯＣＨＥＭＩＳ
ＴＲＹ ＯＦ ＡＭＩＮＯ ＡＣＩＤＳ，ＰＥＰＴＩＤＥＳ ＡＮＤ ＰＲＯＴＥＩＮＳ
）、Ｂ．Ｗｅｉｎｓｔｅｉｎ編集、マルセルデッカー（Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ）、
ニューヨーク、第２６７（１９８３）頁を参照にされたい。

「ペプチド結合物（ｐｅｐｔｉｄｅ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）」は、ペプチドが本明細書
で説明する修飾された糖を用いて結合されている本発明の種を称する。

用語「アミノ酸」は、天然に存在する、および合成アミノ酸、ならびに天然に存在する
アミノ酸と同様な様式で機能するアノ酸、例えばヒドロキシプロリン、γ−カルボキシグルタメミノ酸類似体およびアミノ酸模造物を称する。天然に
存在するアミノ酸は遺伝子コードによりコードされるもの、ならびに後に修飾されるアミ
ートおよびＯ−ホスホセリン
である。アミノ酸類似体は、天然に存在するアミノ酸と同じ基本的化学的構造、すなわち
水素、カルボキシル基、アミノ基およびＲ基に結合したα炭素を有する化合物、例えばホ
モセリン、ノルロイシン、メチオニンスルホキシド、メチオニンメチルスルホニウムを称
する。そのような類似体は修飾されたＲ基（例えば、ノルロイシン）または修飾されたペ
プチド骨格を有するが、天然に存在するアミノ酸と同じ基本的化学構造を保持する。アミ
ノ酸模造物は、アミノ酸の一般的化学構造とは異なる構造を有するが、天然に存在するア
ミノ酸と同様の様式で機能する化学化合物を指す。 本明細書で使用するアミノ酸は、以
下の表１に示すように、その完全名により、それらに対応する３文字コードにより、また
はそれらに対応する１文字コードにより表す：

本発明はまた、上で確認されたようなタンパク質を含んでなるタンパク質またはペプチ
ドの類似体も提供する。類似体は保存的アミノ酸配列の差異により、または配列に影響し
ない修飾により、あるいはその両方により天然に存在するタンパク質またはペプチドとは
異なることができる。例えばタンパク質またはペプチドの１次配列は変えるが、通常はそ
の機能を変えない保存的アミノ酸の変化を作成することができる。保存的アミノ酸置換に
は典型的には以下の群内の置換を含む：
グリシン、アラニン；
バリン、イソロイシン、ロイシン；
アスパラギン酸、グルタミン酸；
アスパラギン、グルタミン；
セリン、トレオニン；
リシン、アルギニン；
フェニルアラニン、チロシン。

修飾（通常は１次配列を変えない）には、 インビボまたはインビトロの、ペプチドの
化学的誘導化、例えばアセチル化またはカルボキシル化を含む。またグリコシル化の修飾
、例えばペプチドの合成およびプロセッシング中、またはさなるプロセッシング段階での
ペプチドのグリコシル化パターンを修飾することにより；例えばペプチドをグリコシル化
に影響を及ぼす酵素、例えば哺乳動物のグリコシル化または脱グリコシル化酵素に暴露す
ることにより作られるものを含む。またリン酸化アミノ酸残基を有する配列、例えばホス
ホチロシン、ホスホセリンまたはホスホトレオニンも含む。

もちろんペプチドは活性に影響を及ぼさずに修飾されるアミノ酸残基を含むことができ
ると考える。例えば末端を誘導化してブロッキング基、すなわち「望ましくない分解」（
この用語は化合物の機能に影響を及ぼすと思われる化合物の末端で任意の種類の酵素的、
化学的または生化学的分解、すなわちその末端での化合物の順次分解を意味する）からＮ
−末端およびＣ−末端を保護し、かつ／または安定化するために適する化学置換基を含む
ことができる。

ブロッキング基にはペプチドのインビボ活性に悪い影響を及ぼさないペプチド化学の分
野で従来から使用されている保護基を含む。例えば適当なＮ−末端ブロッキング基は、Ｎ
−末端のアルキル化またはアシル化により導入することができる。適当なＮ−末端ブロッ
キング基の例には、Ｃ_１−Ｃ_５分岐もしくは非分岐アルキル基、ホルミルおよびアセチル
基のようなアシル基、ならびにアセトアミドメチル（Ａｃｍ）、ＦｍｏｃまたはＢｏｃ基
のようなそれらの置換形を含む。アミノ酸のデスアミノ類似体も有用なＮ−末端ブロッキ
ング基であり、そしてペプチドのＮ−末端にカップリングされるか、またはＮ−末端残基
の代わりに使用されるかのいずれかであり得る。適当なＣ−末端ブロッキング基（ここで
Ｃ−末端のカルボキシル基が含まれるか、または含まれない）には、エステル、ケトンま
たはアミドを含む。エステルまたはケトン−形成アルキル基、特にメチル、エチルおよび
プロピルのような低級アルキル基、および１級アミン（−ＮＨ_２）のようなアミド形成ア
ミノ基、およびメチルアミノ、エチルアミノ、ジメチルアミノ、ジエチルアミノ、メチル
エチルアミノ等のようなモノ−およびジ−アルキルアミノ基は、Ｃ−末端ブロッキング基
の例である。アグマチンのようなデスカルボキシル化アミノ酸類似体も有用なＣ−末端ブ
ロッキング基であり、そしてペプチドのＣ−末端残基にカップリングされるか、またはそ
れに変えて使用することができる。さらに末端の遊離アミノおよびカルボキシル基はペプ
チドから一緒に取り出して、ペプチドの活性に影響を及ぼすことなくそれらのデスアミノ
およびデスカルボキシル化形を生じることができると考えられる。

他の修飾も活性に悪影響を及ぼさずに包含することができ、そしてこのような修飾には
限定するわけではないが天然のＬ−異性体における１以上のアミノ酸をＤ−異性体中のア
ミノ酸に置換することを含む。このようにペプチドは１以上のＤ−アミノ酸残基を含んで
もよく、あるいはすべてがＤ−形のアミノ酸から構成されてもよい。本発明に従いペプチ
ドのレトロ−インベルソ（ｒｅｔｒｏ−ｉｎｖｅｒｓｏ）形、例えばすべてのアミノ酸が
Ｄ−アミノ酸形に置換されている転化（ｉｎｖｅｒｔｅｄ）ペプチドも企図する。

本発明の酸付加塩も機能的均等物として企図する。すなわちペプチドの水溶性塩を提供
するために、塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸等の無機酸で、あるいは酢酸、プロ
ピオン酸、グリコール酸、ピルビン酸、蓚酸、リンゴ酸、マロン酸、コハク酸、マレイン
酸、フマル酸、酒石酸、クエン酸、安息香酸、シンナミン酸、マンデル酸、メタンスルホ
ン酸、エタンスルホン酸、ｐ−トルエンスルホン酸、サリチル酸等のような有機酸で処理
した本発明のペプチドは、本発明での使用に適している。

タンパク質分解的分解に対するペプチドの耐性を改善し、または溶解特性の至適化し、
またはペプチドを治療薬としてより適するようにするために、通常の分子生物学的技術を
使用して修飾されたペプチドも含む。そのようなペプチドの類似体には、天然に存在する
Ｌ−アミノ酸以外の残基、例えばＤ−アミノ酸または天然には存在しない合成アミノ酸を
含有するものを含む。本発明のペプチドは本明細書に掲載する具体的な例示法の生成物に
限定されない。

本明細書で使用する用語「ＭＡＬＤＩ」はマトリックス支援レーザー脱離イオン化の略
である。イオン化中、ＳＡ−ＰＥＧ（シアル酸−ポリ（エチレングリコール））は糖タン
パク質のＮ−グリカン構造から部分的に排除され得る。

本明細書で使用する用語「グリコシルトランスフェラーゼ（ｇｌｙｃｏｓｙｌｔｒａｎ
ｓｆｅｒａｓｅ）」とは、供与体の糖を受容部分（ａｃｃｅｐｔｏｒ ｍｏｉｅｔｙ）に
転移する能力を有する任意の酵素／タンパク質を称する。

本明細書で使用する用語「修飾された糖（ｍｏｄｉｆｉｅｄ ｓｕｇｅｒ）」は、本発
明の方法でペプチドのアミノ酸またはグリコシル残基に酵素的に付加された天然に存在す
る、または天然には存在しない炭水化物を称する。修飾された糖は限定するわけではない
が糖ヌクレオチド（モノ−、ジ−およびトリ−ホスフェート）、活性化糖（例えばグリコ
シルハライド、グリコシルメシラート）および活性化もされず、ヌクレオチドでもない糖
を含む多数の酵素基質から選択される。

「修飾された糖」は「修飾基（ｍｏｄｉｆｙｉｎｇ ｇｒｏｕｐ）」を用いて共有的に
官能化される。有用な修飾基には限定するわけではないが、水溶性ポリマー、治療部分、
診断部分、生体分子等を含む。修飾基での官能化の位置は、「修飾された糖」がペプチド
に酵素的に加えられることを妨げないように選択される。

用語「水溶性（ｗａｔｅｒ−ｓｏｌｕｂｌｅ）」とは水中で幾らかの検出可能な溶解度
を有する部分を称する。水溶性を検出し、かつ／または定量するための方法は当該技術分
野では周知である。例として水溶性ポリマーには、ペプチド、サッカリド、ポリ（エーテ
ル）、ポリ（アミン）、ポリ（カルボン酸）等を含む。ペプチドは混合配列を有するか、
または単一アミノ酸からなる（例えばポリ（リシン））ことができる。同様にサッカリド
は混合配列であるか、または単一サッカリドサブユニット（例えばデキストラン、アミロ
ース、キトサンおよびポリ（シアル酸））からなることができる。ポリ（エーテル）の例
はポリ（エチレングリコール）である。ポリ（エチレンイミン）はポリアミンの例であり
、そしてポリ（アスパラギン）酸は代表的なポリ（カルボン酸）である。

本明細書で使用する用語「グリコシル連結基（ｇｌｙｃｏｓｙｌ ｌｉｎｋｉｎｇ ｇ
ｒｏｕｐ）」とは、作用物質（例えば水溶性ポリマー、治療部分、生体分子）が共有結合
するグリコシル残基を指す。本発明の方法において「グリコシル連結基」は、グリコシル
化または非グリコシル化ペプチドに共有結合するようになり、これにより作用物質をペプ
チド上のアミノ酸および／またはグリコシル残基に連結する。「グリコシル連結基」は、
一般に「修飾された糖」をペプチド上のアミノ酸および／またはグリコシル残基に酵素的
に結合することにより、「修飾された糖」に由来する。「完全なグリコシル連結基（ｉｎ
ｔａｃｔ ｇｌｙｃｏｓｙｌ ｌｉｎｋｉｎｇ ｇｒｏｕｐ）」はグリコシル部分に由来
する連結基を称し、ここで結合物を連結する個々のサッカリドモノマーは分解、例えばメ
タ過ヨウ素酸ナトリウムにより酸化されない。本発明の「完全なグリコシル連結基」はグ
リコシル単位（１つまたは複数）の付加により、または元のサッカリド構造から１以上の
グリコシル単位の除去により天然に存在するオリゴ糖に由来することができる。

本明細書で使用する用語「標的部分（ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｍｏｉｅｔｙ）」および「
標的剤（ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ａｇｅｎｔ）」は、身体の特定の組織または領域に選択的
に局在化する種を称する。局在化は分子決定基の特異的認識、標的剤または結合物の分子
サイズ、イオン的相互作用、疎水的相互作用等により媒介される。作用物質を特定の組織
または領域に標的化する他のメカニズムは、当業者により知られている。

本明細書で使用する「治療部分（ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｍｏｉｅｔｙ）」は、治療
に有用な任意の作用物質を意味し、それらには限定するわけではないが抗生物質、抗−炎
症剤、抗−腫瘍剤、サイトトキシンおよび放射性剤を含む。「治療部分」には生物活性剤
（１より多くの治療部分が担体に結合している構築物、例えば多機能剤（ｍｕｌｔｉｖａ
ｌｅｎｔ ａｇｅｎｔ））のプロドラッグを含む。治療部分はペプチドおよびペプチドを
含む構築物も含む。例示ペプチドには図１および本明細書中の表５および表６に開示され
ているものを含む。

本明細書で使用する「抗−腫瘍剤」とはガンを克服するために有用な任意の作用物質を
意味し、限定するわけではないがサイトトキシンおよび代謝拮抗物質、アルキル化剤、ア
ンスラサイクリン、抗生物質、抗有糸分裂剤、プロカルバジン、ヒドロキシウレア、アス
パラギナーゼ、コルチコステロイド、インターフェロンおよび放射性剤のような作用物質
を含む。また用語「抗腫瘍剤」の範囲内に包含されるのは、ペプチドと−腫瘍活性、例え
ばＴＮＦ−αとの結合物である。結合物は限定するわけではないが、治療用タンパク質と
本発明の糖タンパク質との間で形成されるものを含む。代表的な結合物は、ＰＳＧＬ−１
とＴＮＦ−αとの間で形成される結合物である。

本明細書で使用する「サイトトキシンまたは細胞傷害剤（ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ ａｇｅ
ｎｔ）」は、細胞に有害な任意の作用物質を意味する。例にはタキソール、サイトカラシ
ンＢ、グラミシジンＤ、エチジウムブロミド、エメチン、マイトマイシン、エトポシド、
テノポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ドキソルビシン、ダウノル
ビシン、ジヒドロキシアントラシンジオン、ミトキサントロン、ミトラマイシン、アクチ
ノマイシンＤ、１−デヒドロテストステロン、グルココルチコイド、プロカイン、テトラ
カイン、リドカイン、プロプラノルオールおよびピューロマイシンおよびそれらの類似体
または相同体を含む。他のトキシンには例えばリシン、ＣＣ−１０６５および類似体、ヅ
オカルマイシンを含む。さらに別のトキシンにはジフテリアトキシンおよび蛇毒（例えば
コブラ毒）を含む。

本明細書で使用するように、「放射性剤」には腫瘍を診断し、または破壊するために効
果的な任意の放射性同位体を含む。例には限定するわけではないが、インジウム−１１１
、コバルト−６０およびテクネチウムを含む。さらにウラン、ラジウムおよびトリウムの
ような天然に存在する放射性同位体元素（これらは典型的には放射性同位体の混合物を表
す）は、放射性剤の適切な例である。金属イオンは典型的には有機錯化部分で錯化される
。

多くの有用な錯化基、クラウンエーテル、クリプタンド等が当該技術分野では知られて
おり、そして本発明の化合物に包含することができる（例えばＥＤＴＡ、ＤＴＰＡ、ＤＯ
ＴＡ、ＮＴＡ、ＨＤＴＡ等、およびＤＴＰＰ、ＥＤＴＰ、ＨＤＴＰ、ＮＴＰ等のようなそ
れらのホスホネート類似体）。例えばＰｉｔｔ ｅｔ ａｌ．、「鉄過剰負荷の処置のた
めの錯化剤の設計（Ｔｈｅ Ｄｅｓｉｇｎ ｏｆ Ｃｈｅｌａｔｉｎｇ Ａｇｅｎｔｓ
ｆｏｒ Ｔｈｅ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｉｒｏｎ Ｏｖｅｒｌｏａｄ）」、生物学
および医学における無機化学（ＩＮＯＲＧＡＮＩＣ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ ＩＮ ＢＩＯ
ＬＯＧＹ ＡＮＤ ＭＥＤＩＣＩＮＥ）で；Ｍａｒｔｅｌｌ編集；アメリカ化学学会、ワ
シントン、Ｄ．Ｃ．、１９８０、第２７９〜３１２頁；Ｌｉｎｄｏｙ、大環リガンド錯体
の化学（ＴＨＥ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ ＯＦ ＭＡＣＲＯＣＹＣＬＩＣ ＬＩＧＡＮＤ
ＣＯＭＰＬＥＸＥＳ）；ケンブリッジ大学出版、ケンブリッジ、１９８９；Ｄｕｇａｓ、
生物有機化学（ＢＩＯＯＲＧＡＮＩＣ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ）；スプリンガー−ファーラ
ーク、ニューヨーク、１９８９、およびそれらの中に含まれている参考文献を参照にされ
たい。

さらに錯化剤、クラウンエーテルおよびシクロデキストリンを他の分子に付ける多数の
経路を当業者は利用することができる。例えばＭｅａｒｅｓ ｅｔ ａｌ．，「インビボ
のキレート−標識タンパク質およびポリペプチドの性質（Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ
Ｉｎ Ｖｉｖｏ Ｃｈｅｌａｔｅ−Ｔａｇｇｅｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ Ｐｏｌｙ
ｐｅｐｔｉｄｅｓ）」、タンパク質の修飾：食品、栄養および薬理学的観点（ＭＯＤＩＦ
ＩＣＡＴＩＯＮ ＯＦ ＰＲＯＴＥＩＮＳ：ＦＯＯＤ，ＮＵＴＲＩＴＩＯＮＡＬ，ＡＮＤ
ＰＨＡＲＭＡＣＯＬＯＧＩＣＡＬ ＡＳＰＥＣＴＳ）」で、Ｆｅｅｎｅｙ ｅｔ ａｌ
．、アメリカ化学学会、ワシントン、Ｄ．Ｃ．、１９８２、第３７０〜３８７頁；Ｋａｓ
ｉｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．，９：１０８−１１７（
１９８８）；Ｓｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．，８：２
４９−２５５（１９９７）を参照にされたい。

本明細書で使用するところの「製薬学的に許容され得る担体」には、結合物と合わせた
時に結合物活性の活性を保持し、そして個体の免疫系とは非反応性の任意の物質を含む。
例には限定するわけではないが、リン酸緩衝化生理食塩水、水、油／水型乳液のような乳
液、および様々な種類の湿潤剤のような標準的な製薬学的担体を含む。他の担体には、滅
菌溶液、コート錠剤を含む錠剤およびカプセルを含んでもよい。典型的にはそのような担
体は澱粉、ミルク、糖、ある種のクレー、ゼラチン、ステアリン酸またはその塩、ステア
リン酸マグネシウムまたはカルシウム、タルク、植物油脂または油、ガム、グリコールの
ような賦形剤、または他の既知の賦形剤を含む。そのような担体はまた、香料および着色
用添加剤または他の材料を含んでもよい。そのような担体を含んでなる組成物は、周知な
常法により配合される。

本明細書で使用するように、「投与する」とは個体への経口投与、座薬としての投与、
局所的接触、静脈内、腹腔内、筋肉内、病巣内（ｉｎｔｒａｌｅｓｉｏｎａｌ）、鼻内ま
たは皮下投与、鞘内投与、または緩効性デバイス（例えばミニ−浸透圧ポンプ）の移植を
意味する。

用語「単離された」とは、物質を生産するために使用する成分を実質的または本質的に
含まない物質を称する。本発明のペプチド結合物について、用語「単離された」とはペプ
チド結合物を調製するために使用する混合物中の物質を通常付随する成分を実質的または
本質的に含まない物質を称する。「単離された」および「純粋な」とは互換的に使用する
。典型的には本発明の単離されたペプチド結合物は好ましくは範囲として表される純度の
レベルを有する。ペプチド結合物に関する純度範囲の下限は約６０％、約７０％または約
８０％であり、そして純度範囲の上限は約７０％、約８０％、約９０％または約９０％よ
り高い。

ペプチド結合物が約９０％より高い純度である時、それらの純度も好ましくは範囲で表
される。純度範囲の下限は約９０％、約９２％、約９４％、約９６％または約９８％であ
る。純度範囲の上限は約９２％、約９４％、約９６％、約９８％または約１００％である
。

純度は技術的に認識されている分析法（例えば銀染色ゲル上のバンドの強度、ポリアク
リルアミドゲル電気泳動、ＨＰＬＣまたは類似の手段）により決定される。

本明細書で使用する「群の本質的な各員」とは、ペプチドに付加される選択された割合
の修飾された糖が、ペプチド上の多数の同一な受容体部位（ａｃｃｅｐｔｏｒ ｓｉｔｅ
）に付加されている、本発明のペプチド結合物群の特徴を説明する。「群の本質的な各員
」は、修飾された糖に対するペプチド結合物上の部位の「均一性」にも言及しており、そ
して少なくとも約８０％、好ましくは少なくとも約９０％、そしてより好ましくは少なく
とも約９５％均一である本発明の結合物を称する。

「均一性」とは、修飾された糖が結合する受容体部分の群全域の構造的一貫性を称する
。すなわち各修飾された糖が、それぞれ他の修飾された糖が結合する受容体部位と同じ構
造を有する受容体部位に結合している本発明のペプチド結合物では、ペプチド結合物は約
１００％均一であると言える。均一性は典型的には範囲で表される。ペプチド結合物につ
いて均一性の範囲の下限は約６０％、約７０％または約８０％であり、そして純度範囲の
上限は約７０％、約８０％、約９０％または約９０％より高い。

ペプチド結合物が約９０％以上均一である時、それらの均一性も好ましくは範囲で表さ
れる。均一性の範囲の下限は約９０％、約９２％、約９４、約９６％または約９８％であ
る。純度範囲の上限は約９２％、約９４％、約９６％、約９８％または約１００％の均一
性である。ペプチド結合物の純度は典型的には当業者に既知の１以上の方法、例えば液体
クロマトグラフィー−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）、飛行スペクトロメトリーのマトリックス
支援レーザー脱離質量時間（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ）、キャピラリー電気泳動等により決定
される。

糖ペプチド種に関して言う時、「実質的に単一なグリコフォーム（ｓｕｂｓｔａｎｔｉ
ａｌｌｙ ｕｎｉｆｏｒｍ ｇｌｙｃｏｆｏｒｍ）」または「実質的に単一なグリコシル
化パターン（ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ ｐａｔｔｅｒｎ）」とは、問題のグリコシル
トランスフェラーゼ（例えばフコシルトランスフェラーゼ）によりグリコシル化される受
容体部分の割合を指す。例えばα１，２−フコシルトランスフェラーゼの場合では、実質
的にすべての（以下に定義するように）Ｇａｌβ１，４−ＧｌｃＮＡｃ−Ｒおよびそのシ
アリル化類似体が本発明のペプチド結合物中でフコシル化される場合、実質的に単一なフ
コシル化パターンが存在する。当業者は出発原料がグリコシル化受容体部分（例えばフコ
シル化Ｇａｌβ１，４−ＧｌｃＮＡｃ−Ｒ部分）を含んでもよいと理解するだろう。すな
わち計算されるグリコシル化の割合は、本発明の方法によりグリコシル化される受容体部
分、ならびに出発原料中ですでにフコシル化された受容体部分を含む。

「実質的に単一」の上記定義において用語「実質的に」とは、一般に特定のグリコシル
トランスフェラーゼについて少なくとも約４０％、少なくとも約７０％、少なくとも約８
０％、より好ましくは少なくとも約９０％、そしてさらに好ましくは少なくとも約９５％
の受容体部分がグリコシル化されることを意味する。
発明の説明
Ｉ．グリカン鎖の改造するための方法
本発明は、好ましくは修飾された糖をペプチドに付加することを含む特別にカスタマイ
ズされた、または所望のグリコシル化パターンを有するペプチド分子を提供するような様
式で、糖ペプチド分子へ、またはそれから糖をインビトロで付加および／または削除する
ための方法および組成物を含む。したがって本発明の重要な特徴は、任意の細胞型により
生産されるペプチドを取り、そしてペプチド上にコアグリカン構造を生成し、その後にグ
リカン構造をインビトロで改造して哺乳動物における治療的使用に適するグリコシル化パ
ターンを有するペプチドを生成することである。

ペプチドのグリコシル化パターンの重要性は、正しくグリコシル化されたペプチドを生
産するための現在のインビボ法の、特にこれらのペプチドが組換えＤＮＡの方法論を使用
して生産される時の限界から当該技術分野では周知である。さらに本発明まで、ペプチド
は工業的規模で生産できるが、ペプチド上に所望のグリカン構造を有する糖ペプチドを生
成することは可能でなかった。

本発明では、本明細書のいたるところで記載するような「所望のグリコシル化」を有す
る糖ペプチドを提供する様式で、ペプチド上に存在すべきではない糖部分が除去され、そ
してペプチドに付加されるべき、場合により修飾された糖を含む糖部分が付加されるよう
に、細胞により生産されるペプチドが適当な酵素およびその基質の体系的付加によりイン
ビトロで酵素的に処理される。
Ａ．Ｎ−結合グリカンを改造する方法
１つの観点では、本発明は商業的または製薬学的に興味深いほとんどのペプチドが本明
細書でトリマンノシルコア（ｔｒｉｍａｎｎｏｓｙｌ ｃｏｒｅ）と呼ぶ共通する５個の
糖構造を含んでなり、これはペプチド鎖上の配列Ａｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒでアスパラ
ギンにＮ−結合しているという事実を利用する。基本的なトリマンノシルコアは本質的に
ペプチドに結合した２個のＮ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）残基および３個の
マンノース（Ｍａｎ）残基からなり、すなわちこれは場合によりフコース残基を含むこと
ができる場合を除き、このような５個の糖残基を含んでなり、そしてさらなる糖は含まな
い。第１ＧｌｃＮＡｃはアスパラギンのアミド基に結合し、そして第２のＧｌｃＮＡｃは
β１，４−結合を介して第１に結合している。マンノース残基はβ１，４−結合を介して
第２のＧｌｃＮＡｃに結合し、そして２個のマンノース残基がそれぞれα１，３およびα
１，６結合を介してこのマンノースに結合している。トリマンノシルコア構造の図解的説
明は図２、左側に示す。ほとんどのペプチド上のグリカン構造はトリマンノシルコアに加
えて他の糖を含んでなるのが通例であるが、トリマンノシルコア構造は哺乳動物のペプチ
ド上のＮ−結合グリカンの本質的特徴を表す。

本発明は、ペプチド上にグリカン分子の構造の基本的要素としてトリマンノシルコア構
造を有するペプチドの生成を含む。系がそれ自体天然に存在するものであるか、あるいは
それらは組換えＤＮＡ法を含むかどうかにかかわらず、ペプチドを生産するために使用す
る種々の細胞系を考慮して、本発明は任意の細胞型で生産されるペプチド上のグリカン分
子が基本的なトリマンノシルコア構造に減少できる方法を提供する。いったん基本的なト
リマンノシルコア構造を生成したら、次いで本明細書に記載する方法を使用して、ペプチ
ドにペプチドの治療的効果を強化する１以上の特性を付与するペプチド上の所望するグリ
カン構造をインビトロでペプチドに生成することが可能である。

本明細書に記載する考察から、用語「トリマンノシルコア」は図２、左側に示すグリカ
ン構造を記載するために使用することは明らかなはずである。トリマンノシルコア構造を
有する糖ペプチドは、それらに加えられたさらなる糖を有してもよく、そしてほとんどの
部分について、糖が所望するグリカン構造を有するペプチドを生じるかどうかには無関係
に、それに加えられたさらなる構造を有する。用語「基本的なトリマンノシルコア構造」
は、本明細書中のいたるところで定義している。用語「要素」が「トリマンノシルコア構
造」の記載には含まれない時、グリカンはさらにそれに付いた糖を含むトリマンノシルコ
ア構造を含んでなる。

用語「基本的なトリマンノシルコア糖ペプチド」は、本明細書では主に基本的なトリマ
ンノシルコア構造を含んでなるグリカン構造を有する糖ペプチドを指すために使用する。
しかし場合によりそれに結合したフコース残基を含んでもよい。本明細書に記載するよう
に、基本的なトリマンノシルコア糖ペプチドは１つの最適例であり、したがって本発明の
グリカン改造方法の好適な出発原料である。

本発明のグリカン改造方法の別の最適な出発原料は、１または２個のさらなるＧｌｃＮ
Ａｃ残基が各α１，３およびα１，６−マンノース残基に加えられたトリマンノシルコア
を有するグリカン構造である（例えば図３の第２行の、図の左から２番目の構造を参照に
されたい）。この構造は本明細書では「Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４」と呼ぶ。場合により、
この構造はコアフコース分子を含んでもよい。いったんＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造が生
成したら、本明細書に記載する方法を使用してペプチドの治療的効果を強化する１以上の
特性を糖ペプチド上に付与する所望のグリカン構造を糖ペプチド上にインビトロで生成す
ることが可能である。

それらの天然の形態では、本発明のＮ−結合糖ペプチド、そして特に本発明に有用な哺
乳動物およびヒトの糖ペプチドは、トリマンノシルコア構造およびそれに結合した１以上
の糖を用いてＮ−結合グリコシル化される。

用語「糖ペプチド」および「糖ポリペプチド」は本明細書では同義的に使用し、そして
ペプチドに結合した糖部分を有するペプチド鎖を指す。本明細書では小さい糖ポリペプチ
ドまたは糖ペプチドを、大きな糖ポリペプチドまたは糖ペプチドから区別する識別は行わ
ない。すなわち大変わずかなアミノ酸をそれらのペプチド鎖中に有するホルモン分子（例
えばしばしばわずか３アミノ酸）および他の大変大きなペプチドも、それらが結合した糖
部分を有するならば総称用語「糖ポリペプチド」および「糖ペプチド」に含める。しかし
用語「ペプチド」の使用はペプチドが糖ペプチドであることを除外しない。

所望のグリコシル化を有するＮ−結合糖ペプチドの例は、それに結合した少なくとも１
つのＧｌｃＮＡｃ残基を含むトリマンノシルコアを有するＮ−結合グリカンを有するペプ
チドである。この残基はＮ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩ（ＧｎＴ−Ｉ
）を使用してトリマンノシルコアに加えられる。第２のＧｌｃＮＡｃ残基を加える場合、
Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩＩ（ＧｎＴ−ＩＩ）を使用する。場合
によりさらなるＧｌｃＮＡｃ残基をＧｎＴ−ＩＶおよび／またはＧｎＴ−Ｖを用いて加え
てもよく、そして第３のバイセクティング（ｂｉｓｅｃｔｉｎｇ）ＧｌｃＮＡｃ残基をＮ
−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩＩＩ（ＧｎＴ−ＩＩＩ）を使用してトリ
マンノシルコアのβ１，４マンノースに結合することができる。場合により、この構造は
、ガラクトース残基を各非−バイセクティングＧｌｃＮＡｃに加えるためにβ１，４ガラ
クトシルトランスフェラーゼを用いて処理することにより延長してもよく、そしてさらに
場合により、α２，３またはα２，６−シアリルトランスフェラーゼ酵素を使用して、シ
アル酸残基を各ガラクトース残基に加えてもよい。バイセクティングＧｌｃＮＡｃをグリ
カンに付加することは、引き続きガラクトースおよびシアル酸残基の付加に必要ではない
；しかしラットおよびヒトＧｎＴ−ＩＩＩ酵素の基質親和性に関して、グリカン上の１以
上のガラクトース残基の存在は、ガラクトースを含むグリカンがこれらＧｎＴ−ＩＩＩ形
の基質ではないのでバイセクティングＧｌｃＮＡｃの付加を防止する。このようにバイセ
クティングＧｌｃＮＡｃの存在が望まれ、そしてこのような形のＧｎＴ−ＩＩＩを使用す
る場合、グリカンはバイセクティングＧｌｃＮＡｃの付加前に除去されるさらなるガラク
トースおよび／またはシアル酸残基を含べきであることが重要である。他のＧｎＴ−ＩＩ
Ｉ形はそれらの活性にこの特異的な基質の順序を必要としない。

「所望のグリコシル化」を有するペプチドの種々の観点を表すグリカン構造の例は、本
明細書に提供する図面に示す。「所望のグリコシル化」を有するペプチドのインビトロ生
成に関する正確な手順は、本明細書のいたるところに記載する。しかし本発明は本明細書
に開示する任意の１つのグリカン構造のみに限定されると解釈されるべきではない。むし
ろ本発明は本明細書に提供する方法論を使用して作成され得るありとあらゆるグリカン構
造を含むと解釈すべきである。

場合により、基本的なトリマンノシルコア構造のみがペプチドの所望するグリコシル化
を構成するかもしれない。例えば唯一のトリマンノシルコアを有するペプチドは、ゴーシ
ェ病に関与することが示された（Ｍｉｓｔｒｙ ｅｔ ａｌ．，１９６６，Ｌａｎｃｅｔ
３４８：１５５５−１５５９；Ｂｉｊｓｔｅｒｂｏｓｃｈ ｅｔ ａｌ．，１９９６，Ｅ
ｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２３７：３４４−３４９）。

本発明に従い、所望のグリコシル化を有するペプチドを生成するために以下の手順が明
らかとなる。
ａ）共通する特徴としてトリマンノシルコア構造およびそれに結合した１以上の糖の少な
くとも１以上の異種または均一な混合物を有する１以上のグリカン分子を有する糖ペプチ
ドから始めて、唯一のグリカン構造として基本的なトリマンノシルコア構造を有するか、
または唯一のグリカン構造としてＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４を有する糖ペプチドの比率を上
げることが可能である。これはグリカン構造の糖の異種または均一混合物が基本的なトリ
マンノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造に減少するまで、それを開裂する適当
数の酵素を適当な順序で糖ペプチドに体系的に加えることによりインビトロで達成される
。どのようにこれがなされるかの具体例は、ペプチドが生産される細胞型、それゆえに細
胞により最初に生産されたペプチド上に存在するグリカン構造（１つまたは複数）の複雑
さの程度を含む種々の因子に大部分が依存する。どのように複雑なグリカン構造が基本的
なトリマンノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造に減少できるかを図３に提示し
、そして本明細書のいたるところで詳細に記載する。
ｂ）細胞のグリコシル化機構が唯一のグリカン構造としてペプチド上に基本的なトリマン
ノシルコア構造を有するペプチドを生産する、天然に存在する細胞を単離することにより
、そのようなペプチドを生成することが可能である。次に選択したペプチドが唯一のグリ
カン構造としてペプチド上に基本的なトリマンノシルコア構造を有するように、選択する
ペプチドをコードするＤＮＡを、ＤＮＡが転写、翻訳、そしてグリコシル化される細胞に
トランスフェクトする。例えば機能的ＧｎＴ−Ｉ酵素を欠く細胞は数種の糖ペプチドを生
産するだろう。場合によってはこれらはトリマンノシルコアに結合したさらなる糖を伴わ
ない糖ペプチドとなることもある。しかし別の場合では、生産されるペプチドはトリマン
ノシルコアに結合した２つのさらなるマンノース残基を有することができ、Ｍａｎ５グリ
カンを生じる。これも本発明の改造方法に望ましい出発原料である。そのようなグリカン
構造の生成の具体例を本明細書に記載する。
ｃ）あるいはペプチド上に唯一のグリカン構造として基本的なトリマンノシルコアまたは
Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するペプチドが生産されるように、特異的なグリコシル
化機構を付与するために細胞を遺伝的に工作することが可能である。選択したペプチドが
基本的なトリマンノシルコア構造のみを含んでなる増加した数のグリカンを有するように
、選択したペプチドをコードするＤＮＡを、ＤＮＡが転写、翻訳、そしてグリコシル化さ
れる細胞にトランスフェクトする。例えばＧｎＴ−Ｉを欠くように遺伝的に工作されたあ
る種の細胞は、基本的なトリマンノシルコア構造を有するグリカンを生産するか、あるい
は細胞に依存して、結合した２つのさらなるマンノース残基が加えられたトリマンノシル
コアを有するグリカン（Ｍａｎ５）を生産することができる。細胞がＭａｎ５グリカン構
造を生産する時、細胞は２つのさらなるマンノース残基を開裂してトリマンノシルコアを
生成するマンノシダーゼ３を発現するようにさらに遺伝的に工作されることができる。あ
るいはこのＭａｎ５グリカンはインビトロでマンノシダーゼ３とインキューベーションし
て同じ効果を有することが可能である。
ｄ）ｂ）およびｃ）での考察から、細胞は基本的なトリマンノシルコアまたはそれに結合
したＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するペプチドのみを生産する必要はないことが容易
に明らかである。むしろｂ）およびｃ）で記載した細胞が１００％の基本的なトリマンノ
シルコア構造（すなわち、それに結合したさらなる糖を持たない）、あるいは１００％の
Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するペプチドを生産しなければ、細胞は実際には唯一の
グリカン構造として基本的なトリマンノシルコア構造、またはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構
造を、それに結合したさらなる糖を有するこれらの構造に加えて組み合わせて有するペプ
チドの異種の混合物を生産する。結合したさらなる糖を有するトリマンノシルコアまたは
Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するペプチドの比率は、１つの構造を有するペプチドの
比率とは反対に、それらを生産する細胞に依存して変動するだろう。グリカンの複雑さ（
すなわちトリマンノシルコアにどの糖がどれくらい結合しているか）も、それらを生産す
る細胞に依存して変動するだろう。
ｅ）いったん基本的なトリマンノシルコアまたは１または２個のＧｌｃＮＡｃ残基がそれ
に結合したトリマンノシルコアを有する糖ペプチドが上記のａ）、ｂ）またはｃ）に従い
生産されれば、本発明に従い、さらなる糖分子をインビトロでトリマンノシルコア構造に
加えて、所望のグリコシル化を有するペプチド（すなわち、インビトロでカスタマイズさ
れたグリカン構造を有するペプチド）を生成する。
ｆ）しかしすべてではないが幾らかの所望する糖を結合して含む基本的なトリマンノシル
コアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するペプチドが生産される場合の時は、グリ
カン構造を基本的なトリマンノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造に減少するこ
となく、残りの所望の糖を付加することのみが必要である。したがって場合により、さら
なる糖を結合したトリマンノシルコア構造を有するグリカン構造を有するペプチドは、改
造の適当な出発原料である。
基本的なトリマンノシルコア糖ペプチドの単離
本発明の基本的なトリマンノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４糖ペプチドは、必
要ならばペプチド精製の分野で周知な技術を使用して単離し、そして精製することができ
る。適当な技術にはクロマトグラフィー技法、等電点電気泳動技法、超遠心技法等を含む
。そのような任意の技法を使用して、本発明の組成物を調製することができ、ここで本発
明の糖ペプチドは通常、細胞培養基内に見いだされる他のペプチドおよび他の成分から単
離されている。精製の程度は例えば他のペプチドに関して９０％または９５％、あるいは
一層高い、例えば９８％となり得る。例えばＤｅｕｔｓｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．（編集、
１９９０、ペプチド精製に対する手引き（Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｐｕｒｉ
ｆｉｃａｔｉｏｎ）、Ｈａｒｃｏｕｒｔ Ｂｒａｃｅ Ｊｏｖａｎｏｖｉｃｈ、サンディ
エゴ）を参照にされたい。

従来技術の方法により生産された糖ペプチド中に存在するＮ−結合グリカンの異質性は
通常、所望の糖ペプチドを生産するために修飾することができる少ない割合の標的糖ペプ
チドを単離することを可能にするだけである。本発明では、大量の基本的なトリマンノシ
ルコア糖ペプチドおよびＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４グリカンを含む他の所望する糖ペプチド
を生産することができ、次いでこれらはさらに修飾されて所望するグリコシル化を有する
大量のペプチドを生成することができる。

ペプチドに結合した特定の型のグリカンの特異的濃縮は、所望のグリカンに親和性を有
するレクチンを使用して達成することができる。そのような技術は糖生物学の分野では周
知である。

以下により詳細に記載する本発明の重要な特徴は、いったんペプチド上にコアグリカン
構造が生成されれば、次いでこのグリカン構造は哺乳動物において改善された治療的使用
を有する望ましいグリコシル化を有するペプチドを生成するためにインビトロで改造され
ることである。哺乳動物は任意の適当な種でよく、そして好ましくはヒトである。

所望のグリコシル化を持つペプチドを調製するのための種々のシナリオおよび正確な方
法および組成物が、以下の開示から明らかになるだろう。

哺乳動物で治療に使用するためのペプチド生産の最終的な目的は、ペプチドがペプチド
の治療的利益を無効にするというよりは促進するグリカン構造を含んでなるべきであると
いうことである。本明細書を通して開示するように、細胞中で生産されるペプチドは、所
望のグリコシル化を有し、こうして哺乳動物での治療的使用に適するペプチドが生成する
ように、グリカン上に存在すべきではない糖の開裂およびグリカン上に存在すべき糖の付
加を触媒する種々の酵素を用いて、インビトロで処理されることができる。細胞中でペプ
チドの種々のグリコ形の生成は、上に記載する。所望するグリコシル化を有するペプチド
生成の様々なメカニズムをこれから記載し、ここで出発原料、すなわち細胞により生産さ
れるペプチドは細胞型毎に異なってもよい。本開示から明らかになるように、出発原料は
そのグリカン組成に関して単一である必要はない。しかし出発原料は、大量の最終産物、
すなわち正しくグリコシル化されたペプチドが生産されるために、ある一定のグリコ形に
ついて豊富にすることが好ましい。

本発明に従い好適な態様では、所望のグリコシル化を有するペプチドをもたらす分解お
よび合成反応（ｅｖｅｎｔ）には、ある点で基本的なトリマンノシルコア構造またはＭａ
ｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造をペプチド上に生成することを含む。

本発明はペプチドに１以上の選択したグリコシル残基を加える手段も提供し、その後に
修飾した糖をペプチドの少なくとも１つの選択したグリコシル残基に結合させる。本態様
は例えば、修飾された糖を、ペプチド上には存在しないか、または望ましい量で存在しな
いいずれかの選択したグリコシル残基に結合させることが望ましい時に有用である。この
ように修飾された糖をペプチドにカップリングさせる前に、選択したグリコシル残基を酵
素または化学的カップリングによりペプチドに結合させる。別の態様ではペプチドのグリ
コシル化パターンは、ペプチドから炭水化物残基を除去することにより修飾された糖の結
合前に改変させる。例えば国際公開第９８／３１８２６号パンフレットを参照にされたい
。

ペプチド上に存在する任意の炭水化物部分の付加または除去は、化学的にまたは酵素的
に行う。化学的な脱グリコシル化は好ましくはペプチド変異体を化合物であるトリフルオ
ロメタンスルホン酸または均等な化合物に暴露することにより行われる。この処理は連結
糖（Ｎ−アセチルグルコサミンまたはＮ−アセチルガラクトサミン）を除くほとんどすべ
ての糖の開裂をもたらすと同時に、ペプチドは完全なままである。化学的な脱グリコシル
化は、Ｈａｋｉｍｕｄｄｉｎ ｅｔ ａｌ／．１９８７，Ａｒｃｈ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂ
ｉｏｐｈｙｓ．２５９：５２およびＥｄｇｅ ｅｔ ａｌ．，１９８１，Ａｎａｌ．Ｂｉ
ｏｃｈｅｍ．１１８：１３１に記載されている。ペプチド変異体上の炭水化物部分の酵素
的開裂は、種々のエンド−およびエキソ−グリコシダーゼの使用により、Ｔｈｏｔａｋｕ
ｒａ ｅｔ ａｌ．，１９８７，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１３８：３５０に記載され
ているように行うことができる。

グリコシル部分の化学的付加は、任意の技術的に認識されている方法により行う。糖部
分の酵素的付加は好ましくは本明細書に説明する方法の変法を使用して行い、天然のグリ
コシル単位を本発明で使用する修飾された糖に置換する。糖部分を付加する他の方法は、
米国特許第５，８７６，９８０号、同第６，０３０，８１５号、同第５．７２８，５５４
号および同第５，９２２，５７７号明細書に開示されている。

選択されたグリコシル残基の結合点の例には、限定するわけではないが：（ａ）Ｎ−お
よびＯ−結合グリコシル化の部位；（ｂ）グリコシルスランスフェラーゼの受容体である
末端グリコシル部分；（ｃ）アルギニン、アスパラギンおよびヒスチジン；（ｄ）遊離カ
ルボキシル基；（ｅ）システインのもののような遊離スルフヒドリル基；（ｆ）セリン、
トレオニンまたはヒドロキシプロリンのもののような遊離ヒドロキシル基；（ｇ）フェニ
ルアラニン、チロシンまたはトリプトファンのもののような芳香族残基；あるいは（ｈ）
グルタミンのアミド基を含む。本発明での使用法の例は、１９８７年９月１１日に公開さ
れた国際公開第８７／０５３３０号パンフレットおよびＡｐｌｉｎ ａｎｄ Ｗｒｉｓｔ
ｏｎ ＣＲＣ Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，ｐｐ．２５９−３０６（１９８１
）に記載されている。

本明細書で提供する幾つかの図面に示す例を特に扱って、ペプチド上に所望のグリカン
を生産するためのインビトロ酵素反応の順序に関する説明をこれから与える。以下に開示
する各酵素転換の正確な反応条件は糖生物学の当業者には周知であり、故にここでは繰り
返さない。このような種類の反応に関する反応条件の総説は、Ｓａｄｌｅｒ ｅｔ ａｌ
．，１９８２，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ８３：４５８−５１４およ
びそれに引用されている文献を参照にされたい。

図２では、左側に基本的なトリマンノシルコアグリカンの構造を示す。この構造は、基
本的なトリマンノシルコア構造をＧｎＴ−Ｉ、続いてＧｎＴ−ＩＩ、そしてさらにＧｎＴ
−ＩＩＩ、およびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを含んでなる糖供与体の存在下でインキューベー
ションすることにより、バイセクティングＧｌｃＮＡｃを有する完全なグリカン構造に転
換することが可能であり、ここでＧｌｃＮＡｃは順次、基本的なトリマンノシルコア構造
に付加されてバイセクティングＧｌｃＮＡｃを有するトリマンノシルコアを生成する。

図４では、バイセクティングＧｌｃＮＡｃを含むトリマンノシルコアグリカンの、ガラ
クトースおよびＮ−アセチルノイラミン酸を含んでなる複雑なグリカン構造への転換を示
す。バイセクティングＧｌｃＮＡｃを含むトリマンノシルコアグリカンを最初にガラクト
シルトランスフェラーゼおよび供与体分子としてＵＤＰ−Ｇａｌとインキューベーション
し、ここで２個のガラクトース残基が分子上の周辺ＧｌｃＮＡｃ残基に加えられる。次い
で酵素ＮｅｕＡｃ−トランスフェラーゼを使用して２個のＮｅｕＡｃ残基を１から各ガラ
クトース残基に加える。

図５では、高マンノースグリカン構造の基本的なトリマンノシルコアグリカンへの転換
を示す。高マンノースグリカン（Ｍａｎ９）はマンノシダーゼ１の存在下で順次インキュ
ーベーションされて、Ｍａｎ５構造を生成し、そして次にマンノシダーゼ３の存在下でイ
ンキューベーションされて、すべて、しかし３個のマンノース残基を残してグリカンから
除去される。あるいはＭａｎ９構造のインキューベーションは、単にマンノシダーゼ３の
存在下でのインキューベーションによりトリマンノシルコア構造のみに戻し改作されても
よい。上記図２および４に提示するスキームに従い、次にこの基本的なトリマンノシルコ
アグリカンの複雑なグリカン分子への転換が可能である。

図６では、植物細胞により生産される典型的な複雑なＮ−結合グリカン構造を示す。植
物細胞がＧｎＴ−Ｉ酵素活性を欠く時、キシロースおよびフコースはグリカンに付加され
ることはできないことに注目することが重要である。すなわちＧｎＴ−Ｉノック−アウト
細胞の使用は、これらの細胞がどのような「戻し改作」反応を行うことなくさらなる糖を
付加することができる基本的なトリマンノシルコアを有するペプチドを生産する点で本発
明に特定の利点を提供する。同様に、植物細胞中で生産される構造がグリカンのＭａｎ５
変形物であり、ＧｎＴ−Ｉがこれらの細胞に存在しなければ、キシロースおよびフコース
はこの構造に付加されることができない。この場合、マンノシダーゼ３を使用してＭａｎ
５構造を基本的なトリマンノシルコア（Ｍａｎ３）に戻し改作することができる。本明細
書に提供する方法に従い、今、所望する糖部分をトリマンノシルコアに付加して所望する
グリカン構造を生成することが可能である。

図７では、昆虫細胞で生産される典型的な複雑なＮ−結合グリカン構造を示す。明らか
に、例えばフコースのようなさらなる糖も存在する。さらにここでは示さないが、昆虫細
胞は９個ものマンノース残基を有する高マンノースグリカンを生産することができ、そし
てそれに結合したさらなる糖を含むかもしれない。昆虫細胞ではＧｎＴ−Ｉノックアウト
細胞がフコース残基をグリカンに付加することを妨げる場合もある。このように昆虫細胞
中でのペプチドの生産は、好ましくはＧｎＴ−Ｉノックアウト細胞で達成される。このよ
うにして生産されたグリカンは、次いで必要ならば本明細書に記載する任意の方法および
スキームを使用してインビトロで戻し改作されることができ、そしてさらなる糖を本明細
書に提供する方法およびスキームを使用してインビトロでそれらに加えてもよい。

図３では、様々な完成段階のグリカン構造を示す。特にバイセクティングＧｌｃＮＡｃ
残基を含まない複雑な炭水化物グリカン構造から基本的なトリマンノシルコア構造のイン
ビトロの酵素的生成を示す。またそれらからのバイセクティングＧｌｃＮＡｃを含むグリ
カン構造の生成を示す。生産することができる幾つかの中間体グリカン構造を示す。これ
らの構造は細胞により生産されることができ、あるいは本明細書に記載するインビトロ戻
し改作反応で生産されることができる。糖部分はインビトロで基本的なトリマンノシルコ
ア構造に、または所望するグリカンを生産するために任意の適当な中間体構造に付加する
ことができる。

図８では、高マンノース構造から始まるグリカンを戻し改作またはそれに付加するため
に行うことができる一連の可能なインビトロ反応を示す。例えばＭａｎ９グリカンはマン
ノシダーゼ１を使用して改作してＭａｎ５グリカンを生成するか、あるいはこれはマンノ
シダーゼ３または１以上の微生物マンノシダーゼを使用してトリマンノシルコアに改作し
てもよい。次いでＧｎＴ−ＩおよびまたはＧｎＴ−ＩＩを使用してさらなるＧｌｃＮＡｃ
残基をグリカンに転移することができる。さらにグリカン分子がＧｎＴ−Ｉを持たない細
胞中で生産される時には起こらない状況を示す（影を付けた箱を参照にされたい）。例え
ばフコースおよびキシロースは、ＧｎＴ−Ｉが活性であり、そしてＧｌｃＮＡｃの分子へ
の転移を促進する時にのみグリカンに付加され得る。

図９はトリマンノシルコア構造から始まり、２アンテナ、３アンテナそしてさらには４
アンテナグリカン構造を合成するための周知法を表す。本発明の方法に従い、これらの各
構造は糖生物学の分野で周知の適切な酵素および反応条件を使用して、インビトロで合成
することが可能である。

図１０では、トリマンノシルコア構造から始まり、さらにより一層複雑な炭水化物構造
を合成するためのスキームを示す。例えばシアリル化されていてもいなくてもよいルイス
ｘおよびルイスａ抗原構造をインビトロで生産するためのスキームを示す。そのような構
造はペプチド上に存在する時、免疫応答をアップレギュレート（ｕｐｒｅｇｕｌａｔｉｎ
ｇ）またはダウンレギュレート（ｄｏｗｎｒｅｇｕｌａｔｉｎｇ）するために免疫学的な
利点をペプチドに付与することができる。さらにそのような構造は、これらの構造の型が
細胞接着ペプチド等への結合に関与するので、ペプチドを特異的な細胞に標的化するため
にも有用である。

図１１はセリンまたはトレオニンから始まる多くのＯ−結合ペプチドを調製するための
例示スキームである。

図１２はコア１から４と名付けられた４種類のＯ−結合グリカン構造を表す一連の図解
である。コア構造は点線で囲む。この構造に含むことができる糖には、ガラクトース残基
に加えられたシアル酸残基およびＧｌｃＮＡｃ残基に加えられたフコース残基を含む。

このように好適な態様では、本発明は基本的なトリマンノシルコアまたはＭａｎ３Ｇｌ
ｃＮＡｃ４構造が結合する単離および精製された糖ペプチドを提供し、この糖ペプチドを
グリコシルトランスフェラーゼ酵素およびグリコシル部分を有する供与体分子と、グリコ
シル部分を糖ペプチドに転移させるために適する条件下で接触させることにより、Ｎ−結
合グリコシル化糖ペプチドを作成する方法を提供する。次に所望のグリコシル化パターン
を有するペプチドを生産するためのトリマンノシルコア糖ペプチドまたはＭａｎ３Ｇｌｃ
ＮＡｃ４糖ペプチドのカスタマイズ化が、当該技術分野で周知の技術を使用して所望の糖
部分の順次付加により達成される。
グリカン１次構造の決定
Ｎ−結合糖ペプチドが細胞により生産される時、本明細書のいたるところで記載するよ
うに、これは他の糖部分をそれに付加する前に共通の、一般的には基本的なトリマンノシ
ルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造に減少されなければならないグリカン構造の異
種の混合物を含んでなるかもしれない。どの糖を特定のグリカン構造から除去するべきで
あるかを正確に決定するために、１次グリカン構造を同定することが必要となる場合があ
る。グリカンの１次構造を決定するための技術は当該技術分野では周知であり、そして例
えばＭｏｎｔｒｅｕｉｌ、「糖ペプチドの構造および生合成（Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎ
ｄ Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｇｌｙｃｏｐｅｐｔｉｄｅｓ）」、医学的応用に
おける多糖（Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ ｉｎ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ａｐｐｌｉ
ｃａｔｉｏｎｓ）、第２７３〜３２７頁、１９９６、Ｓｅｖｅｒｉａｎ Ｄａｍｉｔｒｉ
ｕ編集、マルセルデッカー、ニューヨーク州、に詳細に記載されている。したがって糖生
物学の分野の当業者には、細胞により生産されたペプチド群を単離し、そしてそれに結合
しているグリカンの構造（１つまたは複数）を決定することは単純な事柄である。例えば
（ｉ）加水分解、アセトリシス、ヒドラジン分解のような化学的開裂により、または亜硝
酸のデアミネーションによりいずれかでグリコシド結合を分解し（ｓｐｌｉｔｔｉｎｇ）
；（ｉｉ）メチル化を完成し、続いて加水分解またはメタノリシスを行い、そして部分的
にメチル化された単糖のガス−液体クロマトグラフィーおよび質量分析を行い；そして（
ｉｉｉ）エキソグリコシダーゼを使用して単糖間のアノマー結合を決定し、これはまた順
次分解により１次グリカン構造の洞察も提供するための効率的な方法を利用することがで
きる。特に質量分析および核磁気共鳴（ＮＭＲ）分光法の技術、特に高磁場ＮＭＲはグリ
カン１次構造を決定するために成功裏に使用されてきた。

炭水化物分析用のキットおよび装置も市販されている。フルオロフォア支援炭水化物電
気泳動（Ｆｌｕｏｒｏｐｈｏｒｅ Ａｓｓｉｓｔｅｄ Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｅｌ
ｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ：ＦＡＣＥ（商標））は、グリコ（Ｇｌｙｋｏ）社（ノバト
、カリフォルニア州）から販売されている。ＦＡＣＥ分析では、Ｎ−結合グリカンに関し
てはエンドＨまたはＮ−グリカナーゼ（ＰＮＧａｓｅＦ）のいずれかを用いて、あるいは
Ｓｅｒ／Ｔｈｒ結合グリカンに関してはヒドラジンを用いて、ペプチドから複合糖質が放
出される。次いでグリカンは還元末端でフルオロフォアにより非−構造識別様式で標識さ
れる。フルオロフォアで標識したグリカンは次いでポリアクリルアミドゲルでサッカリド
の荷電／質量比ならびに流体力学的容量に基づき分離される。像をＵＶ光の下で取り、そ
してグリカンの組成は標準と比較した移動距離により決定される。オリゴ糖はエキソグリ
コシダーゼ消化によりサッカリドの順次除去による移動シフトを分析することにより、こ
の様式で配列決定することができる。
例示態様
Ｎ−結合グリコシル化の改造は、式１：

式中、Ｘ^３、Ｘ^４、Ｘ^５、Ｘ^６、Ｘ^７およびＸ^１７は、（独立して選択された）単糖ま
たはオリゴ糖残基であり；そして
ａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅおよびｘは（独立して選択された）０、１または２であるが、ただ
しａ、ｂ、ｃ、ｄ、ｅおよびｘから選択される少なくとも１つの員は１または２である、
を参照にして最もよく説明される。

式１はトリマンノシルコアを含んでなる、好ましくはペプチド骨格のアスパラギン残基
に共有結合しているグリカン構造を記載する。好適な発現系は、トリ−マンノシルコアを
含んでなるＮ−結合グリカンを含む外因性のペプチドを発現し、そして分泌する。本発明
の改造方法を使用して、これらペプチド上のグリカン構造は所望する任意のグリカン構造
に都合よく改造することができる。例示的な反応条件は、実施例および参考文献全体に見
いだされる。

好適な態様では、式１に記載するグリカンは構造が特異的な決定基を有するように改造
される。グリカンの構造は中でもペプチドの生物学的活性を強化し、ペプチドに新しい生
物活性を与え、ペプチドの生物学的活性を除去し、またはとりわけ天然のペプチドのグリ
コシル化パターンにより良く近づけるために選択することができる。

第１の好適な態様では、ペプチドＮ−結合グリカンを改造して天然のヒトのタンパク質
のグリコシル化パターンにより良く近づける。この態様では、式１に記載するグリカン構
造は以下の部分：
Ｘ^３およびＸ^５＝｜−ＧｌｃＮＡｃ−Ｇａｌ−ＳＡ；
ａおよびｃ＝１；
ｄ＝０または１；
ｂ、ｅおよびｘ＝０
を有するように改造される。

この態様は異質な細胞発現系で発現するヒトペプチドに特に有利である。Ｎ−結合グリ
カン構造をこの立体配置に改造することにより、ペプチドはとりわけヒト患者中での免疫
原性が低くなり、かつ／またはより安定となる。

第２の好適な態様では、ペプチドＮ−結合グリカンがトリ−マンノシルコア上にバイセ
クティングＧｌｃＮＡｃ残基を有するように改造される。この態様では、式１に記載する
グリカン構造は以下の部分：
Ｘ^３およびＸ^５は｜−ＧｌｃＮＡｃ−Ｇａｌ−ＳＡ；
ａおよびｃ＝１；
Ｘ^４がＧｌｃＮＡｃであり；
ｂ＝１；
ｄ＝０または１；
ｅおよびｘ＝０
を有するように改造される。

この態様は異質な細胞系で発現する組換え抗体分子に特に有利である。抗体分子がＦｃ
−媒介型細胞傷害性を含む時、Ｆｃドメインに結合したバイセクティングオリゴ糖の存在
が抗体−依存性の細胞傷害性を著しく増すことが知られている。

第３の好適態様では、ペプチドＮ−結合グリカンがシアリル化ルイスＸ部分を有するよ
うに改造される。この態様では、式１に記載するグリカン構造は以下の部分：
Ｘ^３およびＸ^５は

であり；
ａ、ｃ、ｄ＝１；
ｂ、ｅおよびｘ＝０；
Ｘ^６＝フコース
を有するように改造される。

この態様は改造されるペプチドがセレクチン分子およびそれを発現する細胞を標的にす
ることを意図する時に特に有利である。

第４の好適な態様では、ペプチドＮ−結合グリカンが結合部分を有するように改造する
。この結合部分は、とりわけＰＥＧ分子、他のペプチド、薬剤のような低分子でよい。こ
の態様では、式１に記載するグリカン構造は以下の部分：
Ｘ^３およびＸ^５は｜−ＧｌｃＮＡｃ−Ｇａｌ−ＳＡ−Ｒ；
ａおよびｃ＝１または２；
ｄ＝０または１；
ｂ、ｄ、ｅおよびｘ＝０；
ここでＲ＝結合基
を有するように改造される。

結合部分は、とりわけＰＥＧ分子、他のペプチド、薬剤のような低分子でよい。したが
ってこの態様はペプチドを、患者の血流からペプチドの排除を遅らせるＰＥＧ分子に、両
ペプチドを特異的組織または細胞を標的とさせるペプチドに、あるいは相補的な治療的使
用の別のペプチドに結合させるために有用である。

当業者には本発明が上記の好適なグリカン分子に限定されないことは明らかであろう。
好適態様は本発明の改造方法により作成することができる多くの有用なグリカン分子のわ
ずか２〜３である。当業者は他の有用なグリカンをどのように設計するかを知っているだ
ろう。

第１の例示態様では、ペプチドを当該技術分野で周知の方法に従いＣＨＯ（チャイニー
ズハムスター卵母細胞系）で発現させる。Ｎ−結合グリカンの共通（ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ
）部位を持つペプチドがＣＨＯ細胞から発現され、そして分泌される時、Ｎ−結合グリカ
ンは図３の上段に表す構造を有する。これらすべての構造が存在することができるが、断
然最も多くの構造は右側の２つである。式１の用語において、
Ｘ^３およびＸ^５は｜−ＧｌｃＮＡｃ−Ｇａｌ−（ＳＡ）であり；
ａおよびｃ＝１；
ｂ、ｄ、ｅおよびｘ＝０
である。

したがって１つの例示態様では、ＣＨＯ細胞で発現するペプチドのＮ−結合グリカンは
、ペプチドをガラクトース受容体分子およびシアル酸供与体分子に特異的であるグリコシ
ルトランスフェラーゼと接触させることにより、好適なヒト化グリカンに改造する。この
工程を図３および実施例２で具体的に説明する。別の例示態様では、ＣＨＯ細胞から発現
され、そして分泌されるペプチドのＮ−結合グリカンを、好適なＰＥＧ化構造に改造する
。ペプチドを最初にシアル酸に特異的なグリコシダーゼと接触させて末端ＳＡ部分を除去
し、そして次いでガラクトース受容体部分およびシアル酸受容体部分に特異的であるグリ
コシルトランスフェラーゼとＰＥＧ−シアル酸−ヌクレオチド供与体分子の存在下で接触
させる。場合によりペプチドは次いでガラクトース受容体部分およびシアル酸受容体部分
に特異的であるグリコシルトランスフェラーゼと、シアル酸−ヌクレオチド供与体分子の
存在下で接触させて、すべてのグリカン分子の完全なＳＡキャッピングを確実とする。

他の例示態様では、ペプチドを当該技術分野で周知の方法に従いＳＦ−９細胞系のよう
な昆虫細胞中で発現させる。Ｎ−結合グリカンと共通部位を持つペプチドがＳＦ−９細胞
から発現され、そして分泌される時、Ｎ−結合グリカンは図７の上段に表す構造を有する
。式１の用語において：
Ｘ^３およびＸ^５は｜−ＧｌｃＮＡｃであり；
ａおよびｃ＝０または１；
ｂ＝０；
Ｘ^６はフコースであり；
ｄ＝０、１または２；そして
ｅおよびｘ＝０
である。

トリマンノースコアは昆虫細胞により作られるＮ−結合グリカンのほとんどすべてに存
在し、そして時折、アンテナＧｌｃＮＡｃおよび／またはフコース残基（１つまたは複数
）も存在する。１つの例示態様では、昆虫細胞から発現され、そして分泌されるペプチド
のＮ−結合グリカンは、最初にグリカンをフコース分子に特異的なグリコシダーゼと接触
させ、次いでグリカンをトリマンノースコアの各アンテナ上のマンノース受容体分子、Ｇ
ｌｃＮＡｃ供与体分子に特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−Ｇｌ
ｃＮＡｃ分子の存在下で接触させ；次いでグリカンをＧｌｃＮＡｃ受容体分子、Ｇａｌ供
与体分子に特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−Ｇａｌ分子の存在
下で接触させ；そして次にグリカンをガラクトース受容体分子、シアル酸供与体分子に特
異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−ＳＡ分子の存在下で接触させる
ことにより好適なヒト化グリカンに改造される。当業者は存在するならばフコース分子は
この方法の任意の時点で除去できると考えるだろう。別の例示態様では、前例のヒト化グ
リカンはグリカンをＧｌｃＮＡｃ受容体分子、フコース供与体分子に特異的なグリコシル
トランスフェラーゼとヌクレオチド−フコース分子の存在下で接触させることにより、シ
アリル化ルイスＸグリカンにさらに改造する。この工程は図１０および実施例３で具体的
に説明する。

さらに他の例示態様では、ペプチドは当該技術分野で周知の方法に従いサッカロミセス
セルビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）のような酵母で発
現させる。Ｎ−結合グリカンの共通部位を持つペプチドがＳ．セルビシエ（ｃｅｒｅｖｉ
ｓｉａｅ）細胞から発現され、そして分泌される時、Ｎ−結合グリカンは図５の左に表す
構造を有するだろう。Ｎ−結合グリカンは常にトリマンノシルコアを有し、これはしばし
ばマンノースまたは関連する多糖を用いて１０００残基まで合成される。式１の用語にお
いて、
Ｘ^３およびＸ^５＝｜−Ｍａｎ−Ｍａｎ−（Ｍａｎ）_{０−１０００}；
ａおよびｃ＝１または２；
ｂ、ｄ、ｅおよびｘ＝０
である。

１つの例示態様では、酵母細胞から発現され、そして分泌されるペプチドのＮ−結合グ
リカンは、最初にグリカンをα２マンノース分子に特異的なグリコシダーゼと接触させ、
次にグリカンをα６マンノース分子に特異的なグリコシダーゼと接触させることにより、
基本的なトリマンノースコアに改造される。この工程を図５および実施例６で具体的に説
明する。別の例示態様では、Ｎ−結合グリカンは、基本的なトリマンノースコアグリカン
をトリマンノースコアの各アンテナ上のマンノース受容体分子、ＧｌｃＮＡｃ供与体分子
に特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−ＧｌｃＮＡｃ分子の存在下
で接触させ；次いでグリカンをトリマンノースコアの真ん中のマンノース受容体分子、Ｇ
ｌｃＮＡｃ供与体分子に特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−Ｇｌ
ｃＮＡｃ分子の存在下で接触させ；次いでグリカンをＧｌｃＮＡｃ受容体分子、Ｇａｌ供
与体分子に特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−Ｇａｌ分子の存在
下で接触させ；そして次にグリカンをガラクトース受容体分子、シアル酸供与体分子に特
異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−ＳＡ分子の存在下で接触させる
ことにより、Ｆｃ媒介型の細胞毒性機能を持つ組換え抗体に適するグリカンを作成するた
めにさらに改造される。
この工程は図２、３および４で具体的に説明する。

別の例示態様では、ペプチドは当該技術分野で周知の方法に従い細菌細胞、特に大腸菌
（Ｅ．ｃｏｌｉ）細胞で発現させる。Ｎ−結合グリカンの共通部位を持つペプチドが（Ｅ
．ｃｏｌｉ）細胞で発現する時、Ｎ−結合共通部位はグリコシル化されない。例示態様で
は、ヒト化グリカン分子はペプチドをＮ−結合共通部位およびＧｌｃＮＡｃ供与体分子に
特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチドＧｌｃＮＡｃの存在下で接触さ
せ；そしてさらに成長しているグリカンを受容体および供与体部分に特異的なグリコシル
トランスフェラーゼと、必要な供与体部分の存在下で所望のグリカン構造が完成するまで
順次接触させることにより、ペプチド骨格から構築される。Ｎ−結合グリカンを持つペプ
チドが真核細胞で発現するが、新生ペプチドをゴルジ装置に向ける正しいリーダー配列が
無い時、成熟ペプチドはグリコシル化されないらしい。この場合もペプチドは前述のペプ
チドＮ−結合共通部位から構築することにより、Ｎ−結合グリコシル化を与えることがで
きる。タンパク質が糖部分を用いて化学的に修飾される時、タンパク質を前述のように構
築することができる。

これらの例は本発明を具体的に説明するものであり、そして本発明を限定するものでは
ないことを意味している。当業者は各例で取られる工程が状況によっては異なる順序で行
われ、同じ結果を得ることができると考えるだろう。また当業者は、異なる工程の組が同
じ生成グリカンを生産することもできると理解するだろう。好適な改造されたグリカンは
ペプチドが発現される発現系に対して全く特異的では無いと理解するだろう。改造された
グリカンは単に具体的説明であり、そして当業者は本明細書に具体的には記載していない
グリカンを作成するために、これらの例からどのように原理を取り出し、そしてそれらを
種々の発現系で生産されるペプチドに応用するかを知っている。
Ｂ．Ｏ−結合グリカンの改造方法
Ｏ−グリコシル化は種々の単糖がＯ−グリコシド結合でヒドロキシアミノ酸へ結合して
いることが特徴である。Ｏ−グリコシル化は動物および植物界で広く行き渡った翻訳後修
飾である。タンパク質にＯ−結合したグリカンの構造的複雑さは、Ｎ−結合グリカンのそ
れをはるかに越える。新たに翻訳されたペプチドのセリンまたはトレオニン残基は、ペプ
チドのＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼによりゴルジのシスからトランス区画で修飾され
るようになる。Ｏ−グリコシル化の部位はグリコシルトランスフェラーゼの配列特異性に
より決定されだけでなく、異なる基質部位間の競合およびグリカンを形成する原因となる
他のグリコシルトランスフェラーゼとの競合により媒介される後成的調節によっても決定
される。

Ｏ−結合グリカンは任意に３つの領域：コア、骨格領域および周辺領域を有すると任意
に定義された。Ｏ−結合グリカンの「コア」領域はペプチドに近いグリカン鎖の最も内側
の２または３つの糖である。骨格領域は単一な延長により形成されたグリカン鎖の長さに
主に貢献している。周辺領域は高度な構造の複雑性を現す。Ｏ−結合グリカンの構造的複
雑さはコア構造から始まる。多くの場合で、Ｏ−結合グリカン共通部位に加えた第１の糖
残基はＧａｌＮＡｃであり；しかし糖は中でもＧｌｃＮＡｃ、グルコース、マンノース、
ガラクトースまたはフコースでもよい。図１１は既知のＯ−結合グリカンコア構造および
それらのインビボ合成の原因となる酵素の図解である。

哺乳動物細胞では、少なくとも８つの異なるＯ−結合コア構造が見いだされ、すべてコ
ア−α−ＧａｌＮＡｃ残基に基づく。図１２に表す４つのコア構造が最も一般的である。
コア１およびコア２は哺乳動物細胞で最も豊富な構造であり、そしてコア３およびコア４
はより限定された、器管−特徴的発現系で見いだされる。Ｏ−結合グリカンはＭｏｎｔｒ
ｅｕｉｌ、糖ペプチドの構造および合成（Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｓｙｎｔｈｅｓ
ｉｓ ｏｆ Ｇｌｙｃｏｐｅｐｔｉｄｅｓ）、医学的応用における多糖（Ｐｏｌｙｓａｃ
ｃｈａｒｉｄｅｓ ｉｎ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）で、第２７
３−３２７頁、１９９６、Ｓｅｖｅｒｉａｎ Ｄａｍｉｔｒｉｕ編集、マルセルデッカー
、ニューヨーク州、およびＳｃｈａｃｈｔｅｒ ａｎｄ Ｂｒｏｃｋｈａｕｓｅｎ、分岐
Ｏ−結合グリカンの生合成（Ｔｈｅ Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｂｒａｎｃｈｅ
ｄ Ｏ−Ｌｉｎｋｅｄ Ｇｌｙｃａｎｓ）、１９８９、実験生物学会、第１〜２６頁（英
国）で総説されている。

本開示からＯ−グリコシル化ペプチドのグリカン構造は、Ｎ−結合グリカンについて記
載したものに類似の技術を使用して改造できることは明らかであろう。Ｏ−グリカンはア
スパラギン残基ではなくセリンまたはトレオニン残基に結合している点でＮ−グリカンと
は異なる。Ｎ−グリカンの改造に関して本明細書に記載するように、加水分解酵素を使用
してＯ−結合グリカン中の望ましくない糖部分を開裂し、そして次にさらに望ましい糖を
それらに付加して、カスタマイズされたＯ−グリカン構造をペプチド上に構築することが
できる（図１１および１２を参照にされたい）。

哺乳動物細胞におけるＯ−グリコシル化の最初の段階は、各々が限定された受容体ペプ
チド特異性を有する少なくとも１１種の既知のα−Ｎ−アセチルガラクトサミニルトラン
スフェラーゼの任意のファミリーを使用したＮ−アセチルガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ
）の結合である。一般に各酵素により認識される受容体ペプチドは少なくとも１０個のア
ミノ酸の配列を構成する。１つの特定のＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼにより認識さ
れるアミノ酸配列を含むペプチドは、それらがこの酵素を発現している細胞中で発現し、
そしてそれらがＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃも存在するゴルジ装置に適切に局在するならば、こ
の受容体部位でＯ−グリコシル化されるようになる。

しかし組換えタンパク質の場合、最初のＧａｌｃＮＡｃの結合は起こらないかもしれな
い。発現している細胞に天然なα−Ｎ−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼ酵
素は、組換えペプチドが発現している細胞とは異なる共通配列特異性を有するかもしれな
い。

所望の組換えペプチドは、グリカン鎖を合成しない大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）のような細
菌細胞できる発現させることができる。これらの場合、最初のＧａｌＮＡｃ部分をインビ
トロで付加することが有利である。ＧａｌＮＡｃ部分は、いったん組換えペプチドが可溶
性の状態で回収されれば、ペプチドを適切なＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼとＵＤＰ−
ＧａｌＮＡｃの存在下で接触させることによりインビトロでペプチドに導入することがで
きる。

１つの態様では、Ｏ−結合糖を転移されるために効果的な受容体を構成するアミノ酸の
さらなる配列が存在し得る。そのようなアミノ酸配列はペプチドのコード配列に対する枠
内で融合したＤＮＡ配列によりコードされるか、または化学的手段により導入してもよい
。あるいはペプチドはグリカン鎖を欠いているかもしれない。場合によりペプチドはＮ−
および／またはＯ−結合グリカン鎖を有することができるが、例えばさらなるグリカン置
換を望む時、さらなるグリコシル化部位が必要である。

例示態様では、アミノ酸配列ＰＴＴＴＫ−ＣＯＯＨ（これはヒトのムチンＭＵＣ−１中
の天然なＧａｌＮＡｃ受容体配列である）を融合タグとして加える。次いで融合タンパク
質は大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）中で発現し、そして精製される。次いでペプチドを組換えヒ
トＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼＴ３またはＴ６と、ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃの存在下
で接触させてＧａｌＮＡｃ残基をペプチドにインビトロで転移させる。

このペプチド上のグリカン鎖は、次いでＮ−結合またはＯ−結合グリカンに関して本明
細書に記載した方法を使用してさらに延長することができる。あるいはＧａｌＮＡｃトラ
ンスフェラーゼ反応は、Ｏ−３、４または６位あるいはＮ−２位でＰＥＧに共有的に置換
されるＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃの存在下で行うことができる。複合糖質化（Ｇｌｙｃｏｃｏ
ｎｊｕｇａｔｉｏｎ）は本明細書のいたるところで詳細に記載する。新たなペプチド配列
によりペプチドに導入される抗原性は、結合するグリカンのＰＥＧ化により都合よく遮蔽
することができる。受容体部位融合技術はＰＥＧ部分を導入するだけでなく、限定するわ
けではないがトキシン、抗−感染剤、細胞傷害剤、放射性核種のキレーターおよび組織タ
ーゲッティングのような他の官能性を有するグリカンを含む他のグリカンおよび非−グリ
カン部分を導入するためにも使用することができる。
例示態様
Ｏ−結合グリコシル化の改造は、式２を参照にして最もよく具体的に説明される：

式２は、好ましくはペプチド骨格上のセリンまたはトレオニン残基に共有結合している
ＧａｌＮＡｃを含んでなるグリカン構造を記載する。この構造はＯ−結合グリカンの最も
普通の形態を具体的に説明するために使用するが、本発明はこれらＯ−結合グリカンに単
に限定されると解釈されるべきではない。Ｏ−結合グリカンの他の形態は図１１に具体的
に説明する。本発明に有用な好適な発現系は、ＧａｌＮＡｃ残基を含んでなるＯ−結合グ
リカンを有する外因性ペプチドを発現し、そして分泌する。本発明の改造方法を使用して
、これらペプチド上のグリカン構造は所望する任意のグリカン構造を生成するために都合
よく改造することができる。当業者はいったん本開示から着手すれば、当該技術分野で利
用可能なものと同じ原理、酵素および反応条件を使用してＯ−結合グリカンを改造できる
と考えるだろう。例示的な反応条件は、実施例中に見いだされる。

好適な態様では、グリカン構造は式２に記載する構造が特異的な部分を有するように改
造される。グリカンの構造は中でもペプチドの生物学的活性を強化し、ペプチドに新しい
生物活性を与え、ペプチドの生物学的活性を除去または改変させ、または天然のペプチド
のグリコシル化パターンにより良く近づけるために選択することができる。

第１の好適な態様では、ペプチドＯ−結合グリカンを改造して天然のヒトのタンパク質
のグリコシル化パターンにより良く近づける。この態様では、式２に記載するグリカン構
造が以下の部分：
Ｘ^２は｜−ＳＡ；または｜−ＳＡ−ＳＡであり；
ｆおよびｎ＝０または１；
Ｘ^１０はＳＡであり；
ｍ＝０
を有するように改造される。

この態様は異質な細胞発現系で発現するヒトペプチドに特に有利である。Ｏ−結合グリ
カン構造をこの立体配置を有するように改造することにより、ペプチドはヒト患者中での
免疫原性が低くなり、かつ／またはより安定となる。

別の好適な態様では、ペプチドＯ−結合グリカンはシアリル化ルイスＸ抗原を表すよう
に改造される。この態様では、式２に記載するグリカン構造が以下の部分：
Ｘ^２は｜−ＳＡであり；
Ｘ^１０はＦｕｃまたは｜−ＧａｌＮＡｃ（Ｆｕｃ）−Ｇａｌ−ＳＡであり；
ｆおよびｎ＝１；
ｍ＝０
を有するように改造される。

この態様は改造されるペプチドがセレクチン分子を標的とし、そして細胞がそれを発現
している時に最も効果的である時、特に有利である。

さらに別の好適な態様では、ペプチドＯ−結合グリカンは結合部分を含むように改造さ
れる。この結合部分は、とりわけＰＥＧ分子、他のペプチド、薬剤のような低分子でよい
。この態様では、式２に記載するグリカン構造が下の部分：
Ｘ^２は｜−ＳＡ−Ｒであり；
ｆ＝１；
ｎおよびｍ＝０
ここでＲは結合基である
を有するように改造される。

この態様はペプチドを、患者の血流からペプチドの排除を遅らせるＰＥＧ分子に、両ペ
プチドを特異的組織または細胞を標的とさせるペプチドに、あるいは相補的な治療的使用
の別のペプチドに結合させるために有用である。

当業者には本発明が上記の好適なグリカン分子に限定されないことは明らかであろう。
好適態様は本発明の改造方法を使用して作成することができる多くの有用なグリカン分子
のわずか２〜３である。当業者はいったん本発明から着手すれば他の有用なグリカンをど
のように設計するかを知るだろう。

第１の例示態様では、ペプチドは当該技術分野で周知の方法に従いＣＨＯ（チャイニー
ズハムスター細胞系）で発現させる。Ｏ−結合グリカンの共通部位を持つペプチドがＣＨ
Ｏ細胞から発現され、そして分泌される時、Ｏ−結合グリカンの大部分が式２の用語にお
いて、
Ｘ^２＝｜−ＳＡ；
ｆ＝１；
ｍおよびｎ＝０
である構造を有することが多い。

したがってＣＨＯ細胞中のほとんどのグリカンは、ヒト患者での使用に許容され得るた
めに改造を必要としない。別の例示態様では、ＣＨＯ細胞から発現され、そして分泌され
るペプチドのＯ−結合グリカンは、グリカンをＧａｌＮＡｃ受容体部分およびフコース供
与体部分に特異的であるグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−フコースの存
在下で接触させることにより、シアリル化ルイスＸ構造を含むように改造される。この工
程は図１０および実施例３でＮ−結合グリカンに関して具体的に説明している。

他の例示態様では、ペプチドを当該技術分野で周知の方法に従いｓｆ９のような昆虫細
胞中で発現させる。Ｏ−結合グリカンの共通部位を持つペプチドがほとんどのｓｆ９細胞
から発現され、そして分泌される時、Ｏ−結合グリカンの大部分は式２の用語において、
Ｘ^２＝Ｈ；
ｆ＝０または１；
ｎおよびｍ＝０
である構造を有する。

例えばＭａｒｃｈａｌ ｅｔ ａｌ．，（２００１，Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．３８２：１
５１−１５９）を参照にされたい。１つの例示態様では、昆虫細胞で発現されるペプチド
上のＯ−結合グリカンは、グリカンをＧａｌＮＡｃ受容体分子およびガラクトース供与体
分子に特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−Ｇａｌの存在下で接触
させ；そして次にグリカンをＧａｌ受容体分子およびＳＡ供与体分子に特異的なグリコシ
ルトランスフェラーゼとヌクレオチド−ＳＡの存在下で接触させることにより、ヒト化グ
リカンに改造される。別の例示態様では、Ｏ−結合グリカンをさらにヒト化形態から、グ
リカンをさらにＧａｌＮＡｃ受容体分子およびフコース供与体分子に特異的なグリコシル
トランスフェラーゼと、ヌクレオチド−フコースの存在下で接触させることにより、シア
リル化ルイスＸ形態に改造する。

さらに他の例示態様では、ペプチドは当該技術分野で周知の方法に従い真菌細胞、特に
Ｓ．セルビシエ（ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）細胞で発現させる。Ｏ−結合グリカンの共通部
位を持つペプチドがＳ．セルビシエ（ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）細胞から発現され、そして
分泌される時、ほとんどのＯ−結合グリカンは構造：
｜−ＡＡ−Ｍａｎ−Ｍａｎ_１−２
を有する。Ｇｅｍｍｉｌｌ ａｎｄ Ｔｒｉｍｂｌｅ（１９９９，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉ
ｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ １４２６：２２７−２３７）を参照にされたい。このようなＯ−
結合グリカンをヒトでの使用に改造するために、グリカンをアミノ酸レベルで開裂し、そ
してここから再構築することが好ましい。

１つの例示態様では、グリカンは真菌細胞で発現されるペプチド上のＯ−結合グリカン
であり、そしてグリカンをアミノ酸−ＧａｌＮＡｃ結合に特異的なエンドグリコシダーゼ
と接触させ；そして次いでグリカンをＯ−結合共通部位およびＧａｌＮＡｃ供与体分子に
特異的なグリコシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−ＧａｌＮＡｃの存在下で接触
させ；グリカンをＧａｌＮＡｃ受容体分子およびガラクトース供与体分子に特異的なグリ
コシルトランスフェラーゼと、ヌクレオチド−Ｇａｌの存在下で接触させ；そして次にグ
リカンをＧａｌ受容体分子およびＳＡ供与体分子に特異的なグリコシルトランスフェラー
ゼと、ヌクレオチド−ＳＡの存在下で接触させることにより、ヒト化グリカンに改造する
。

あるいは別の例では、グリカンは真菌細胞で発現されるペプチド上のＯ−結合グリカン
であり、そしてグリカンをタンパク質Ｏ−マンノースβ−１，２−Ｎ−アセチルグルコサ
ミニルトランスフェラーゼ（ＰＯＭＧｎＴＩ）と、ＧｌｃＮＡｃ−ヌクレオチドの存在下
で接触させ；次いでグリカンをヌクレオチド−Ｇａｌの存在下でガラクトシルトランスフ
ェラーゼと接触させ；そして次にグリカンをヌクレオチド−ＳＡの存在下でシアリルトラ
ンスフェラーゼと接触させることによりヒト化グリカンに改造する。

別の例示態様では、ペプチドは当該技術分野で周知の方法に従い細菌細胞、特に大腸菌
（Ｅ．ｃｏｌｉ）細胞で発現させる。Ｏ−結合グリカンの共通部位を持つペプチドが（Ｅ
．ｃｏｌｉ）細胞で発現する時、Ｏ−結合共通部位はグリコシル化されない。この場合、
所望するグリカン分子は上記のＳ．セルビシエ（ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）について記載し
た様式に準じて、ペプチド骨格から構築しなければならない。さらにＯ−結合グリカンを
有するペプチドが新生ペプチドをゴルジ装置に向けるための正しいリーダー配列無しで真
核細胞で発現する時、成熟ペプチドはグリコシル化されないらしい。この場合もＯ−結合
グリコシル構造は、グリカンをペプチドＯ−結合共通部位から直接構築することによりペ
プチドに加えることができる。さらにタンパク質が糖部分を用いて化学的に修飾される時
、タンパク質は前述のように改造される。

これらの例は本発明を具体的に説明するものであり、そして本発明を限定するものでは
ないことを意味している。当業者は同じ結果を得るために各例で取られる工程を状況によ
っては異なる順序で行うことができると考えるだろう。また当業者は異なる工程の組が同
じ生成グリカンを生産することもできると理解するだろう。さらに好適な改造されたグリ
カンはペプチドが発現する発現系に対して全く特異的では無いと理解するだろう。改造さ
れたグリカンは単に具体的説明であり、そして当業者は本明細書に具体的には記載してい
ないグリカンを作成するために、これらの例からどのように原理を取り出し、そしてそれ
らを異なる発現系で生産されるペプチドに応用するかを知っている。
Ｃ．複合糖質化（Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊｕｇａｔｉｏｎ）、総論
本発明はグリコシル化または非グリコシル化ペプチドの結合物の調製法を提供する。本
発明の結合物はペプチドと水溶性ポリマー、治療部分、診断部分、標的部分等のような多
様な種との間で形成される。また提供されるのはリンカーアーム（ｌｉｎｋｅｒ ａｒｍ
）を介して一緒に連結された２以上のペプチドを含む結合物、すなわち多機能性結合物（
ｍｕｌｔｉｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）である。本発明の多機能性結合
物は、同じペプチドの２以上のコピー、または異なる構造および／または特性を持つ多様
なペプチドの集合を含むことができる。

本発明の結合物は、修飾された糖のグリコシル化または非グリコシル化ペプチドへの酵
素的結合により形成される。修飾された糖はペプチドと糖上の修飾基との間に挿入された
時、本明細書でのいわゆる「完全なグリコシル連結基」となる。グリコシルトランスフェ
ラーゼのような酵素の優れた選択性を使用して、本方法は１以上の特異的な位置に所望す
る基を持つペプチドを提供する。すなわち本発明に従い、修飾された糖はペプチド鎖上の
選択された位置に直接結合させられるか（ａｔｔａｃｈｅｄ）、あるいは修飾された糖は
ペプチドの炭水化物部分につけられる（ａｐｐｅｎｄｅｄ）。修飾された糖がペプチド炭
水化物に、およびペプチド骨格のアミノ酸残基に直接、両方で結合したペプチドも本発明
の範囲内である。

既知の化学的および酵素的なペプチドの合成（ｅｌａｂｏｒａｔｉｏｎ）法とは対照的
に、本発明の方法はペプチドおよび実質的に均一な誘導化パターンを有する糖ペプチドを
集成させることが可能であり；本発明で使用する酵素は、一般にペプチドの特定のアミノ
酸残基またはアミノ酸残基の組み合わせに選択的である。この方法はまた修飾されたペプ
チドおよび糖ペプチドの大規模生産にも現実的である。このように本発明の方法は前以て
選択された実質的に単一な誘導化パターンを有するペプチドの大規模調製のための現実的
手段を提供する。この方法は限定するわけではないが、細胞培養細胞（例えば哺乳動物細
胞、昆虫細胞、植物細胞、菌類細胞、酵母細胞または原核細胞）またはトランスジェニッ
ク植物または動物中での生産中に不完全にグリコシル化されたペプチドを含め、治療用ペ
プチドの修飾にも特によく適している。

本発明の方法は、例えば排除速度の低下または免疫もしくは細網内皮系（ＲＥＳ）によ
る取り込み率の低下により、上昇した治療的半減期を有するグリコシル化および非グリコ
シル化ペプチドの結合物も提供する。さらに本発明の方法はペプチド上の抗原決定基を遮
蔽するための手段を提供し、これがペプチドに対する宿主免疫応答を下げるか、または排
除する。標的剤の選択的結合を使用して、ペプチドを特定の標的剤に特異的な特定の組織
または細胞表面レセプターを標的とするためにも使用できる。さらに治療部分を用いて特
異的に修飾された種類のペプチドを提供する。
１．結合物（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）
第１の観点では、本発明はペプチドと選択部分との間に結合物を提供する。ペプチドと
選択部分との間の連結には、ペプチドと選択部分の間に挿入された完全なグリコシル連結
基を含む。本明細書で検討するように、選択部分は、サッカリド単位に結合することがで
きる本質的には任意の種であり、ペプチドに修飾された糖を付ける適切なトランスフェラ
ーゼ酵素により認識される「修飾された糖」を生じる。修飾された糖のサッカリド成分は
、ペプチドと選択部分との間に挿入された時、「完全なグリコシル連結基」となる。この
グリコシル連結基は、選択部分を用いた修飾後に適切なトランスフェラーゼの基質となる
単−またはオリゴ糖から形成される。

本発明の結合物は典型的には一般構造：

ここで、記号ａ、ｂ、ｃ、ｄおよびｓは正のゼロではない整数を表し；そしてｔは０
または正の整数である、
に相当する。「作用物質（ａｇｅｎｔ）」は治療薬、生物活性剤、検出可能な標識、水溶
性部分等である。この「作用物質」はペプチド、例えば酵素、抗体、抗原等であることが
できる。リンカーは任意の広い配列の上記連結基であることができる。あるいはリンカー
は単結合または「ゼロ次リンカー（ｚｅｒｏ ｏｒｄｅｒ ｌｉｎｋｅｒ）」でもよい。
ペプチドの同一性には限界がない。ペプチドの例を図１に提供する。

例示態様では、選択部分は水溶性ポリマーである。水溶性ポリマーは完全なグリコシル
連結基を介してペプチドに共有結合する。グリコシル連結基はペプチド上のアミノ酸残基
またはグリコシル残基のどちらかに共有結合する。あるいはグリコシル連結基は糖ペプチ
ドの１以上のグリコシル単位に結合する。本発明はグリコシル連結基がアミノ酸残基およ
びグリコシル残基の両方に結合した結合物も提供する。

酵素的に付加される完全なグリコシル連結基を介して形成される結合物を提供すること
に加えて、本発明はそれらの置換パターンが高度に均一な結合物を提供する。本発明の方
法を使用して、本発明の結合物群の全域で本質的にすべての修飾された糖部分が、構造的
に同一のアミノ酸またはグリコシル残基の複数のコピーに結合しているペプチド結合物を
形成することが可能である。すなわち第２の観点では、本発明は完全なグリコシル連結基
を介してペプチドに共有結合する水溶性ポリマー部分の群を有するペプチド結合物を提供
する。本発明の好適な結合物では、本質的に群の各員がグリコシル連結基を介してペプチ
ドのグリコシル残基に結合し、そしてグリコシル連結基が結合するペプチドの各グリコシ
ル残基は同じ構造を有する。

また完全なグリコシル連結基を介してペプチド結合物に共有結合した水溶性ポリマー部
分の群を有するペプチド結合物も提供する。好適な態様では、本質的に水溶性ポリマー部
分群の各員が完全なグリコシル連結基を介してペプチドのアミノ酸残基に結合し、そして
完全なグリコシル連結基を結合して有する各アミノ酸残基は同じ構造を有する。

また本発明は、ペプチドが完全なグリコシル連結基を介して治療部分、診断部分、標的
部分、トキシン部分等に結合した上記のものに類似する結合物を提供する。上に引用した
各部分は、低分子、天然ポリマー（例えばペプチド）または合成ポリマーであることがで
きる。

例示態様ではインターロイキン−２（ＩＬ−２）が、ＰＥＧ部分の各末端で完全なグリ
コシル連結基を含む二官能性リンカーを介してトランスフェリンに結合させられる（スキ
ーム１）。例えばＰＥＧリンカーの１末端をトランスフェリンに結合する完全なシアル酸
リンカーで官能化し、そしてもう１端をＩＬ−２に結合する完全なＧａｌＮＡｃリンカー
で官能化する。

別の例示態様ではＥＰＯをトランスフェリンに結合する。別の例示態様ではＥＰＯをグ
リア由来神経栄養増殖因子（ＧＤＮＦ）に結合する。これらの態様では、各結合は上記の
ようにＰＥＧ部分の各末端に完全なグリコシル連結基を含む二官能性リンカーを介してな
される。トランスフェリンはタンパク質を血液脳関門をわたって移動させる。

本明細書に添付する図面で説明するように、本発明の結合物は単−または多−価である
（例えばアンテナ構造）完全なグリコシル連結基を含むことができ、図１３〜２１を参照
にされたい。本発明の結合物はセリンまたはトレオニンから始まるＯ−結合グリカンであ
るグリコシル連結基も含む（図１０）。このように本発明の結合物は、選択部分が単価の
グリコシル連結基を介してペプチドに結合している両方の種を含む。また本発明の範囲内
に含まれるのは、１より多くの選択部分が多価連結基を介してペプチドに結合している結
合物も含む。１以上のタンパク質を一緒に結合して、それらの生物物理的および生物学的
特性を利用することができる。

さらなる態様では、本発明は結合物の成分として標的剤の存在により、特定の組織中に
選択的に局在する結合物を提供する。例示態様では、標的剤はタンパク質である。タンパ
ク質の例にはトランスフェリン（脳、血液プール）、ヒト血清（ＨＳ）−糖タンパク質（
骨、脳、血液プール）、抗体（脳、抗体−特異的抗原を含む組織、血液プール）、凝固第
Ｖ−ＸＩＩ因子（損傷組織、凝血、ガン、血液プール）、血清タンパク質、例えばα−酸
性糖タンパク質、フェチュイン、α−胎児タンパク質（脳、血液プール）、β２−糖タン
パク質（肝臓、アテローム硬化症斑、脳、血液プール）、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦ、Ｍ
−ＣＳＦおよびＥＰＯ（免疫刺激、ガン、血液プール、赤血球過剰生産、神経保護）、お
よびアルブミン（半減期の上昇）。

上記で検討した結合物に加えて、本発明はこれらのおよび他の結合物を調製する方法を
提供する。すなわちさらなる観点では、本発明は選択部分とペプチドとの間の共有結合物
を形成する方法を提供する。したがって本発明は本発明の結合物を身体の特定の組織また
は領域を標的とさせるための方法を提供する。

例示態様では、結合物は水溶性ポリマー、治療部分、標的化部分または生体分子と、グ
リコシル化または非グリコシル化ペプチドとの間に形成される。ポリマー、治療部分また
は生体分子は、間に挿入され、そしてペプチドおよび修飾基（例えば水溶性ポリマー）の
両方を共有結合する完全なグリコシル連結基を介してペプチドに結合させる。この方法は
ペプチドを、修飾された糖および修飾された糖が基質であるグリコシルトランスフェラー
ゼを含む混合物と接触させることを含む。反応は修飾された糖とペプチドとの間に共有結
合を形成するために十分な条件下で行う。修飾された糖の糖部分は、好ましくはヌクレオ
チド糖、活性化糖およびヌクレオチドでもなく活性化されてもいない糖から選択される。

１つの態様では、本発明は２以上のペプチドを連結基を介して連結するための方法を提
供する。連結基は任意の有用な構造であり、そして直−鎖および分岐鎖構造から選択する
ことができる。好ましくはペプチドに結合するリンカーの各末端には、修飾された糖（す
なわち新生の完全なグリコシル連結基）を含む。

本発明の方法の例では、２つのペプチドがＰＥＧリンカーを含むリンカー部分を介して
一緒に連結される。この構築物は上記の絵で説明する一般構造と同じである。本明細書で
記載するように、本発明の構築物は２つの完全なグリコシル連結基（すなわちｓ＋ｔ＝１
）を含む。２つのグリコシル基を含むＰＥＧリンカーに焦点をあてているのは明瞭さを目
的とするものであり、そして本発明のこの態様でのリンカーアームの使用の同一性に限定
すると解釈されるべきではない。

このようにＰＥＧ部分を第１末端で第１のグリコシル単位を用いて、そして第２末端で
第２のグリコシル単位を用いて官能化する。第１および第２のグリコシル単位は好ましく
は異なるトランスフェラーゼの基質であり、第１および第２ペプチドのそれぞれ第１およ
び第２グリコシル単位への直交（ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ）結合を可能とする。実際には（
グリコシル）^１−ＰＥＧ−（グリコシル）^２リンカーを、第１ペプチドおよび第１グリコ
シル単位が基質である第１トランスフェラーゼと接触させ、これにより（ペプチド）^１−
（グリコシル）^１−ＰＥＧ−（グリコシル）^２を形成する。次いで第１トランスフェラー
ゼおよび／または未反応ペプチドを場合により反応混合物から除去する。第２ペプチドお
よび第２グリコシル単位が基質である第２トランスフェラーゼを、（ペプチド）^１−（グ
リコシル）^１−ＰＥＧ−（グリコシル）^２結合物に加え、（ペプチド）^１−（グリコシル
）^１−ＰＥＧ−（グリコシル）^２−（ペプチド）^２を形成する。当業者は上記に概説した
方法が２より多くのペプチド間の結合物を、例えば分岐ＰＥＧ、樹状物、ポリ（アミノ酸
）、多糖等の使用により形成するためにも応用できると考えるだろう。

すでに記載したように例示態様では、インターロイキン−２（ＩＬ−２）は、ＰＥＧ部
分の各末端で完全なグリコシル連結基を含む二官能性リンカーを介してトランスフェリン
に結合される（スキーム１）。ＩＬ−２結合物は結合物のより大きな分子量サイズにより
、ＩＬ−２単独よりも上昇したインビボ半減期を有する。さらにＩＬ−２のトランスフェ
リンへの結合は、結合物が脳を選択的に標的とするために役立つ。例えば、ＰＥＧリンカ
ーの１つの末端をＣＭＰ−シアル酸を用いて官能化し、そしてもう１端をＵＤＰ−Ｇａｌ
ＮＡｃを用いて官能化する。リンカーはＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼの存在下でＩＬ
−２と合わせられ、リンカーアームのＧａｌＮＡｃの、ＩＬ−２上のセリンおよび／また
はトレオニン残基への結合を生じる。

別の例示態様では、トランスフェリンを遺伝子治療に使用するために核酸に結合する。

上記の工程は望みの数のサイクルを通して行うことができ、そして２つのペプチドと１
つのリンカーとの間に結合物を形成することに限定されない。さらに当業者はペプチドを
含むＰＥＧ（または他の）リンカーの末端で完全なグリコシル連結基を官能化する反応が
、同じ反応槽中で同時に起こることができるか、あるいはそれらの反応は段階的様式で行
うことができると考えるだろう。反応を段階的様式で行う時、各段階で生成される結合物
は任意に１以上の反応成分（例えば酵素、ペプチド）から精製される。

さらなる例示態様をスキーム２に説明する。スキーム２は選択したタンパク質、例えば
ＥＰＯが骨を標的とし、そして選択したタンパク質の循環半減期を上昇させる結合物の調
製法を示す。

１以上のペプチド部分をリンカーに結合するために、ＰＥＧ（または他のリンカー）の
反応性誘導体の使用は、本発明の範囲内である。本発明は反応性ＰＥＧ類似体の同一性に
限定されない。ポリ（エチレングリコール）の多くの活性化誘導体が市販されており、そ
して文献で利用可能である。本発明に有用な基質を調製するために用いる適当な活性化Ｐ
ＥＧ誘導体を選択し、そして必要ならば合成することは、十分に当業者の能力の範囲内で
ある。Ａｂｕｃｈｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐ
ｈｙｓ．，７：１７５−１８６（１９８４）；Ａｂｕｃｈｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｊ
．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２５２：３５８２−３５８６（１９７７）；Ｊａｃｋｓｏｎ
ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１６５：１１４−１２７（１９８７）；Ｋ
ｏｉｄｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１
１１：６５９−６６７（１９８３））、トレシレート（Ｎｉｌｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，
Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．，１０４：５６−６９（１９８４）；Ｄｅｌｇａｄｏ
ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１２：１１９−
１２８（１９９０））；Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド誘導化活性エステル（Ｂｕｃｋｍ
ａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｍａｋｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１８２：１３７９−１３８４（
１９８１）；Ｊｏｐｐｉｃｈ ｅｔ ａｌ．，Ｍａｋｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．，１８０：
１３８１−１３８４（１９７９）；Ａｂｕｃｈｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ
Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．，７：１７５−１８６（１９８４）；Ｋａｔｒｅｅ
ｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，８４：１４８７−
１４９１（１９８７）；Ｋｉｔａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，５
１：４３１０−４３１５（１９９１）；Ｂｏｃｃｕ ｅｔ ａｌ．，Ｚ．Ｎａｔｕｒｆｏ
ｒｓｃｈ．，３８Ｃ：９４−９９（１９８３）；カーボネート（Ｚａｌｉｐｓｋｙ ｅｔ
ａｌ．，ポリ（エチレングリコール）化学：生物工学的および生物医学的応用（ＰＯＬ
Ｙ（ＥＴＨＹＬＥＮＥ ＧＬＹＣＯＬ）ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ：ＢＩＯＴＥＣＨＮＩＣＡＬ
ＡＮＤ ＢＩＯＭＥＤＩＣＡＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ）、Ｈａｒｒｉｓ編集、プ
レナム出版、ニューヨーク、１９９２、第３４７−３７０頁；Ｚａｌｉｐｓｋｙ ｅｔ
ａｌ．，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１５：１００−１１４（
１９９２）；Ｖｅｒｏｎｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｔｅ
ｃｈ．，１１：１４１−１５２（１９８５））；イミダゾリルホルメート（Ｂｅａｕｃｈ
ａｍｐ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１３１：２５−３３（１９８３）
；Ｂｅｒｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｂｌｏｏｄ，７１：１６４１−１６４７（１９８８））
；４−ジチオピリジン（Ｗｏｇｈｉｒｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ
Ｃｈｅｍ．，４：３１４−３１８（１９９３））；イソシアネート（Ｂｙｕｎ ｅｔ ａ
ｌ．，ＡＳＡＩＯ Ｊｏｕｒｎａｌ，Ｍ６４９−Ｍ−６５３（１９９２））およびエポキ
シド（Ｎｏｉｓｈｉｋｉ ｅｔ ａｌ．へ発効された米国特許第４，８０６，５９５号明
細書（１９８９）を参照にされたい。他の連結基にはアミノ基と活性化ＰＥＧとの間のウ
レタン結合を含む。Ｖｅｒｏｎｅｓｅ，ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉ
ｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１１：１４１−１５２（１９８５）を参照にされたい。

反応性ＰＥＧ誘導体を利用する別の例示態様では、本発明はペプチドを糸球体によるタ
ンパク質の濾過を遅らせるためにペプチドを、十分なサイズの合成もしくは天然のポリマ
ーに結合させることにより、本質的に血液プールにペプチドを標的させて、選択したペプ
チドの血液循環半減期を伸ばす方法を提供する（例えばアルブミン）。本発明のこの態様
はスキーム３で具体的に説明するが、ここでエリトロポエチン（ＥＰＯ）を化学的および
酵素的修飾の組み合わせを使用してＰＥＧリンカーを介してアルブミンに結合する。

このようにスキーム３で示すように、アルブミンのアミノ酸残基はＸ−ＰＥＧ−（ＣＭ
Ｐ−シアル酸）（ここでＸは反応性基：例えば活性エステル、イソチオシアネート等）で
あるような反応性ＰＥＧ誘導体を用いて修飾される。ＰＥＧ誘導体およびＥＰＯは合わせ
られ、そしてＣＭＰ−シアル酸が基質であるトランスフェラーゼと接触させる。別の具体
的説明の態様では、リシンのε−アミンをＰＥＧ−リンカーのＮ−ヒドロキシスクシンイ
ミドエステルと反応させてアルブミン結合物を形成する。リンカーのＣＭＰ−シアル酸は
ＥＰＯ上の適切な残基、例えばＧａｌに酵素的に結合し、これにより結合物が形成する。
当業者は上記の方法が説明した反応パートナーに限定されないと考えるだろう。さらにこ
の方法は、例えば２以上の末端を有する分岐リンカーを利用することにより２より多くの
タンパク質部分を含む結合物を形成するために実施できる。
２．修飾された糖
修飾されたグリコシル供与体種（「修飾された糖」）は好ましくは、修飾された糖ヌク
レオチド、活性化された修飾された糖およびヌクレオチドでもなく活性化されてもいない
単なるサッカリドである修飾された糖から選択される。任意の所望する炭水化物構造が本
発明の方法を使用してペプチドに加えられる。典型的には構造は単糖であるが、本発明は
修飾された単糖の糖の使用に限定されず；オリゴ糖および多糖も有用である。

修飾された基は酵素的手段、化学的手段またはそれらの組み合わせにより糖部分に結合
させ、これにより修飾された糖を生成する。糖は修飾部分の結合を可能とする任意の位置
で置換されるが、それでもこれは糖を、修飾された糖がペプチドに連結するために使用す
る酵素の基質として機能することを可能とする。好適な態様ではシアル酸が糖である時、
シアル酸はピルビル側の鎖上の９−位または通常はシアル酸中でアセチル化されるアミン
部分上の５−位のいずれかで修飾基に置換される。

本発明の特定の態様では、修飾された糖ヌクレオチドが修飾された糖をペプチドに加え
るために利用される。本発明の方法において修飾された状態で使用される糖ヌクレオチド
の例には、ヌクレオチドモノ−、ジ−またはトリ−ホスフェートまたはそれらの類似体を
含む。好適な態様では修飾された糖ヌクレオチドは、ＵＤＰ−グリコシド、ＣＭＰ−グリ
コシドまたはＧＤＰ−グリコシドから選択される。さらにより一層好ましくは、修飾され
た糖ヌクレオチドは、ＵＤＰ−ガラクトース、ＵＤＰ−ガラクトサミン、ＵＤＰ−グルコ
ース、ＵＤＰ−グルコサミン、ＧＤＰ−マンノース、ＧＤＰ−フコース、ＣＭＰ−シアル
酸またはＣＭＰ−ＮｅｕＡｃから選択される。糖ヌクレオチドのＮ−アセチルアミン誘導
体も本発明の方法で使用される。

本発明は、修飾された糖、例えば修飾された−ガラクトース、−フコースおよび−シア
ル酸を使用して修飾された糖ペプチドの合成法も提供する。修飾されたシアル酸を使用す
る時、シアリルトランスフェラーゼまたはトランス−シアリダーゼ（α２，３−結合シア
ル酸のみ）をこれらの方法に使用することができる。

別の態様では、修飾された糖は活性化された糖である。本発明に有用な活性化された修
飾された糖は、典型的には活性化された脱離基を含むように合成的に改変させたグリコシ
ドである。本明細書で使用する用語「活性化された脱離基」は、酵素が調節する求核性置
換反応で容易に置き換わる部分を称する。多くの活性化された糖が当該技術分野では知ら
れている。例えばＶｏｃａｄｌｏ ｅｔ ａｌ．，炭水化物の化学および生物学（ＣＡＲ
ＢＯＨＹＤＲＡＴＥ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ ＡＮＤ ＢＩＯＬＯＧＹ）、第２巻、Ｅｒｎ
ｓｔ編集、ウィリー−ＶＣＨファーラーグ；ヴァインハイム、ドイツ；Ｋｏｄａｍａ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ．３４：６４１９（１９９３）；Ｌｏｕ
ｇｈｅｅｄ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７４：３７７１７（１９９９）
）を参照にされたい。

活性基（脱離基）の例にはフルオロ、クロロ、ブロモ、トシラートエステル、メシラー
トエステル、トリフラートエステル等を含む。本発明での使用に好適な活性化された脱離
基は、グリコシドの受容体への酵素的転移を有意に立体的に妨害しないものである。した
がって活性化されたグリコシド誘導体の好適態様には、グリコシルフルオリドおよびグリ
コシルメシラートを含み、グリコシルフルオリドが特に好適である。グリコシルフルオリ
ドの中でもα−ガラクトシルフルオリド、α−マンノシルフルオリド、α−グリコシルフ
ルオリド、α−フコシルフルオリド、α−キシロシルフルオリド、α−シアルフルオリド
、α−Ｎ−アセチルグリコサミニルフルオリド、α−Ｎ−アセチルガラクトサミニルフル
オリド、β−ガラクトシルフルオリド、β−マンノシルフルオリド、β−グリコシルフル
オリド、β−フコシルフルオリド、β−キシロシルフルオリド、β−シアリルフルオリド
、β−Ｎ−アセチルグルコサミニルフルオリドおよびβ−Ｎ−アセチルガラクトサミニル
フルオリドが最も好適である。

具体的説明として、グリコシルフルオリドは最初に糖をアセチル化し、そして次にそれ
をＨＦ／ピリジンで処理することにより遊離糖から調製することができる。これは保護さ
れた（アセチル化）グリコシルフルオリドの熱力学的に最も安定なアノマーを生じる（す
なわちα−グリコシルフルオリド）。より安定性が低いアノマー（すなわちβ−グリコシ
ルフルオリド）を所望するならば、これはアノマー性ブロミドまたはクロライドを生成す
るために前アセチル化糖をＨＢｒ／ＨＯＡｃまたはＨＣｌを用いて転換することにより調
製することができる。この中間体を臭化銀のような臭化物塩と反応させて、グリコシルフ
ルオリドを生成する。アセチル化グリコシルフルオリドは、メタノール中の穏やか（触媒
的）な塩基（例えばＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨ）との反応により脱保護される。さらに、多く
のグリコシルフルオリドが市販されている。

他の活性化されたグリコシル誘導体は、当該技術分野で既知の常法を使用して調製する
ことができる。例えば、グリコシルメシラートは完全にベンジル化されたヘミアセタール
状態の糖をメシルクロライドで処理し、続いてベンジル基を除去するための触媒的水素添
加により調製することができる。

さらなる例示態様では、修飾された糖はアンテナ構造を有するオリゴ糖である。好適な
態様では１以上のアンテナの末端が修飾部分を持つ。１つの修飾部分がアンテナ構造を有
するオリゴ糖に結合する時、オリゴ糖は修飾基を「増幅」するために有用であり；ペプチ
ドに結合した各オリゴ糖単位は、修飾基の多数のコピーをペプチドに結合する。上記の図
に説明する本発明の典型的なはさみ状（ｃｈｅｌａｔｅ）の一般構造は、アンテナ構造を
利用して本発明の結合物を調製することから生じる多価種を包含する。多くのアンテナ状
サッカリド構造が当該技術分野では知られており、そして本発明は限定することなくそれ
らを用いて実施することができる。

修飾基の例を以下で検討する。修飾基は１以上の望ましい特性のために選択することが
できる。特性の例には限定するわけではないが、強化された薬物動態学、強化された薬力
学、改善された生体分布、多価種を提供すること、改善された水溶性、強化または縮小し
た親油性および組織ターゲッティングを含む。
Ｄ．ペプチド結合物
ａ）水溶性ポリマー
選択したペプチドの親水性は、アミン−、エステル−、ヒドロキシル−およびポリヒド
ロキシル−含有分子のような極性分子との結合により強化される。代表例には限定するわ
けではないがポリリシン、ポリエチレンイミン、ポリ（エチレングリコール）およびポリ
（プロピレングリコール）を含む。好適な水溶性ポリマーは本質的に非−蛍光性であるか
、あるいはアッセイで蛍光マーカーとして使用するためには不適当であるような最少量の
蛍光を発する。天然に存在しない糖であるポリマーを使用してもよい。さらに他の物質（
例えばポリ（エチレングリコール）、ポリ（プロピレン グリコール）、ポリ（アスパル
テート）、生体分子、治療部分、診断部分等）の共有結合により修飾されている外は天然
に存在する糖の使用も意図している。別の例示態様では、治療用の糖部分をリンカーアー
ムに結合し、そして糖−リンカーアームを続いて本発明の方法を介してペプチドに結合す
る。

水溶性ポリマーおよび糖を活性化するための方法および化学、ならびにサッカリドおよ
びポリマーを種々の種に結合する方法は、技術文献に記載されている。ポリマーを活性化
するために共通して使用する方法には、官能基の臭化シアン、過ヨウ素酸塩、グルタルア
ルデヒド、ビエポキシド、エピクロロヒドリン、ジビニルスルホン、カルボジイミド、ス
ルホニルハライド、トリクロロトリアジン等での活性化を含む（Ｒ．Ｆ．Ｔａｙｌｏｒ，
（１９９１）、タンパク質の固定化．基礎および応用（ＰＲＯＴＥＩＮ ＩＭＭＯＢＩＬ
ＩＳＡＴＩＯＮ．ＦＵＮＤＡＭＥＮＴＡＬＳ ＡＮＤ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ）、マ
ルセルデッカー、ニューヨーク；Ｓ．Ｓ．Ｗｏｎｇ，（１９９２）、タンパク質結合およ
び架橋化の化学（ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ ＯＦ ＰＲＯＴＥＩＮ ＣＯＮＪＵＧＡＴＩＯＮ
ＡＮＤ ＣＲＯＳＳＬＩＮＫＩＮＧ）、ＣＲＣ出版、ボカラトン；Ｇ．Ｔ．Ｈｅｒｍａ
ｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９３）、固定化アフィニティーリガンド技術（ＩＭＭＯ
ＢＩＬＩＺＥＤ ＡＦＦＩＮＩＴＹ ＬＩＧＡＮＤ ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ）、アカデミ
ック出版、ニューヨーク；Ｄｕｎｎ，Ｒ．Ｌ．，ｅｔ ａｌ．，編集、ポリマー性薬剤お
よび薬剤送達系（ＰＯＬＹＭＥＲＩＣ ＤＲＵＧＳ ＡＮＤ ＤＥＬＩＶＥＲＹ ＳＹＳ
ＴＥＭＳ）、ＡＣＳシンポジウムシリーズ、第４６９巻、アメリカ化学学会、ワシントン
、Ｄ．Ｃ．１９９１）を参照にされたい。

反応性ＰＥＧ分子を調製し、そして反応性分子を使用して結合物を形成する経路は、当
該技術分野では既知である。例えば米国特許第５，６７２，６６２号明細書は、直鎖もし
くは分岐ポリ（アルキレンオキシド）、ポリ（オキシエチル化ポリオール）、ポリ（オレ
フィン性アルコール）およびポリ（アクリロモルホリン）から選択されるポリマー性酸の
活性エステルの水溶性および単離可能な結合物を開示し、ここでポリマーは約４４個以上
の反復単位を有する。

米国特許第６，３７６，６０４号明細書は、ポリマーの末端ヒドロキシルをジ（１−ベ
ンゾトリアゾイル）カーボネートと有機溶媒中で反応させることにより、水溶性および非
ペプチド性ポリマーの水溶性の１−ベンゾトリアゾリルカルボン酸エステルの調製法を説
明する。活性エステルを使用してタンパク質またはペプチドのような生物学的な活性剤と
の結合物を形成する。

国際公開第９９／４５９６４号パンフレットは、生物学的な活性剤および活性化された
水溶性ポリマー（安定な連結を介してポリマー骨格に連結された少なくとも１つの末端を
有するポリマー骨格を含んでなり、ここで少なくとも１つの末端は、分岐部分に連結され
た近接反応基を有する分岐部分を含んでなり、ここで生物学的な活性剤が少なくとも１つ
の近接反応基に連結している）を含んでなる結合物を記載する。他の分岐ポリ（エチレン
グリコール）は、国際公開第９６／２１４６９号パンフレットに記載され、そして米国特
許第５，９３２，４６２号明細書は、反応性官能基を含む分岐末端を含む分岐ＰＥＧ分子
を用いて形成された結合物を記載する。遊離反応基はタンパク質またはペプチドのような
生物学的な活性剤と反応することが可能であり、ポリ（エチレン グリコール）と生物学
的な活性種との間に結合物を形成する。米国特許第５，４４６，０９０号明細書は二官能
性ＰＥＧリンカーおよび各ＰＥＧリンカー末端にペプチドを有する結合物の形成における
その使用を記載する。

分解性ＰＥＧ結合を含む結合物は国際公開第９９／３４８３３号：および同第９９／１
４２５９号パンフレットならびに米国特許第６，３４８，５５８号明細書に記載されてい
る。そのような分解性結合は本発明に応用することができる。

反応性ＰＥＧ誘導体およびこの誘導体を使用して形成した結合物の両方が当該技術分野
で知られているが、本発明まで結合物がＰＥＧ（または他のポリマー）とペプチドまたは
糖ペプチドのような別の種との間に完全なグリコシル連結基を介して形成される得ること
は認識されなかった。

多くの水溶性ポリマーが当業者により知られ、そして本発明を実施するするために有用
である。水溶性ポリマーという用語は、サッカリド（例えばデキストラン、アミロース、
ヒアルロン酸、ポリ（シアル酸）、ヘパラン、ヘパリン等）；ポリ（アミノ酸）；核酸；
合成ポリマー（例えばポリ（アクリル酸）、ポリ（エーテル）、例えばポリ（エチレング
リコール）；ペプチド、タンパク質等のような種を包含する。本発明は任意の水溶性ポリ
マーを用いて実施することができ、唯一の限定はポリマーが結合物の残部（ｒｅｍａｉｎ
ｄｅｒ）を結合することができる点を含まなければならないということだけである。

ポリマーの活性化法は国際公開第９４／１７０３９号パンフレット、米国特許第５，３
２４，８４４号明細書、国際公開第９４／１８２４７号、同第９４／０４１９３号パンフ
レット、米国特許第５，２１９，５６４号、同第５，１２２，６１４号明細書、国際公開
第９０／１３５４０号パンフレット、米国特許第５，２８１，６９８号明細書、そしてさ
らに国際公開第９３／１５１８９号パンフレットにも見いだすことができ、そして活性化
ポリマーとペプチドとの間の結合物に関しては例えば、凝固第ＶＩＩＩ因子（国際公開第
９４／１５６２５号パンフレット）、ヘモグロビン（国際公開第９４／０９０２７号パン
フレット）、酸素運搬分子（米国特許第４，４１２，９８９号明細書）、リボヌクレアー
ゼおよびスーパーオキシドジスムターゼ（Ｖｅｒｏｎｅｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ａｐｐ．Ｂ
ｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１１：１４１−４５（１９８５））に見いだすことがで
きる。

好適な水溶性ポリマーは、ポリマーのサンプル中の実質的な割合のポリマー分子がおよ
そ同じ分子量であるものであり；そのようなポリマーは「単分散（ｈｏｍｏｄｉｓｐｅｒ
ｓｅ）」である。

本発明は、ポリ（エチレングリコール）結合物を参照にすることによりさらに具体的に
説明される。ＰＥＧの官能化および結合について、幾つかの総説および小論が入手可能で
ある。例えばＨａｒｒｉｓ，Ｍａｃｒｏｎｏｌ．Ｃｈｅｍ．Ｐｈｙｓ．Ｃ２５：３２５−
３７３（１９８５）；Ｓｃｏｕｔｅｎ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ
１３５：３０−６５（１９８７）；Ｗｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｅｎｚｙｍｅ Ｍｉｃｒｏ
ｂ．Ｔｅｃｈｎｏｌ．１４：８６６−８７４（１９９２）；Ｄｅｌｇａｄｏ ｅｔ ａｌ
．，Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇ Ｃ
ａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ ９：２４９−３０４（１９９２）；Ｚａｌｉｐｓｋｙ，
Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．６：１５０−１６５（１９９５）；およびＢｈａ
ｄｒａ，ｅｔ ａｌ．，Ｐｈａｒｍａｚｉｅ，５７：５−２９（２００２）を参照にされ
たい。

本発明の使用に適するポリ（エチレン グリコール）分子には限定するわけではないが
、以下の式３により記載されるものを含む：

Ｒ＝Ｈ、アルキル、ベンジル、アリール、アセタール、ＯＨＣ−、Ｈ_２Ｎ−ＣＨ_２ＣＨ
_２−、ＨＳ−ＣＨ_２−ＣＨ_２−、

−糖−ヌクレオチド、タンパク質、メチル、エチル：
Ｘ、Ｙ、Ｗ、Ｕ（独立して選択される）＝Ｏ、Ｓ、ＮＨ、Ｎ−Ｒ'；
Ｒ'、Ｒ"'（独立して選択される）＝アルキル、ベンジル、アリール、アルキルアリ
ール、ピリジル、置換アリール、アリールアルキル、アシルアリール；
ｎ＝１〜２０００；
ｍ、ｑ、ｐ（独立して選択される）＝０〜２０
ｏ＝０〜２０
Ｚ＝ＨＯ、ＮＨ_２、ハロゲン、Ｓ−Ｒ"'、活性化エステル、

−糖−ヌクレオチド、タンパク質、イミダゾール、ＨＯＢＴ、テトラゾール、ハライド；
そして
Ｖ＝ＨＯ、ＮＨ_２、ハロゲン、Ｓ−Ｒ"'、活性化エステル、活性化アミド、−糖−ヌ
クレオチド、タンパク質。

好適な態様では、ポリ（エチレングリコール）分子は以下から選択される：

本発明の結合物を形成するために有用なポリ（エチレングリコール）は、直鎖もしくは
分岐している。本発明の使用に適する分岐ポリ（エチレングリコール）分子には、限定す
るわけではないが以下の式により記載されるものを含む：

Ｒ'、Ｒ"、Ｒ"'（独立して選択される）＝Ｈ、アルキル、ベンジル、アリール、ア
セタール、ＯＨＣ−、Ｈ_２Ｎ−ＣＨ_２ＣＨ_２−、ＨＳ−ＣＨ_２−ＣＨ_２−、−（ＣＨ_２）
_ｑＣＹ−Ｚ、−糖−ヌクレオチド、タンパク質、メチル、エチル、ヘテロアリール、アシ
ルアルキル、アシルアリール、アシルアルキルアリール：
Ｘ、Ｙ、Ｗ、Ａ、Ｂ（独立して選択される）＝Ｏ、Ｓ、ＮＨ、Ｎ−Ｒ'（ＣＨ_２）_ｌ；
ｎ、ｐ（独立して選択される）＝１〜２０００；
ｍ、ｑ、ｏ（独立して選択される）＝０〜２０
Ｚ＝ＨＯ、ＮＨ_２、ハロゲン、Ｓ−Ｒ"'、活性化エステル、

−糖−ヌクレオチド、タンパク質；
Ｖ＝ＨＯ、ＮＨ_２、ハロゲン、Ｓ−Ｒ"'、活性化エステル、活性化アミド、−糖−ヌ
クレオチド、タンパク質。

治療用ペプチドのインビボ半減期、曲線下面積および／または滞留時間も、ポリエチレ
ングリコール（ＰＥＧ）およびポリプロピレングリコール（ＰＰＧ）のような水溶性ポリ
マーを用いて強化することができる。例えばＰＰＧを用いたタンパク質の化学的修飾（Ｐ
ＥＧ化：ＰＥＧｙｌａｔｉｏｎ）はそれらの分子量サイズを上げ、そしてそれらの表面−
および官能基−接近性（ａｃｃｅｓｓｉｂｉｌｉｔｙ）を下げるが、それぞれがタンパク
質に結合したＰＰＧのサイズに依存する。これは血漿半減期およびタンパク質溶解的−安
定性に改善をもたらし、そして免疫原性および肝臓の取り込みを下げる（Ｃｈａｆｆｅｅ
ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８９：１６４３−１６５１（１９９２）；
Ｐｙａｔａｋ ｅｔ ａｌ．，Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．Ｃｈｅｍ．Ｐａｔｈｏｌ Ｐｈａ
ｒｍａｃｏｌ．２９：１１３−１２７（１９８０））。インターロイキン−２のＰＥＧ化
は、インビボで抗腫瘍効力を上昇させることが報告され（Ｋａｔｒｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐ
ｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．８４：１４８７−１４９１（１９８７）
）、そしてモノクローナル抗体Ａ７に由来するＦ（ａｂ'）２のＰＥＧ化は、その腫瘍へ
の局在化を向上させた（Ｋｉｔａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈ
ｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２８：１３８７−１３９４（１９９０））。

１つの好適な態様では、本発明の方法により水溶性ポリマーを用いて誘導化されたペプ
チドのインビボ半減期は、非−誘導化ペプチドのインビボ半減期に比べて上昇する。別の
好適な態様では、本発明の方法を使用して水溶性ポリマーを用いて誘導化されたペプチド
の曲線下の面積は、非−誘導化ペプチドの曲線下面積に比べて上昇する。別の好適な態様
では、本発明の方法を使用して水溶性ポリマーを用いて誘導化されたペプチドの滞留時間
は、非−誘導化ペプチドの滞留時間に比べて上昇する。インビボ半減期、曲線下面積およ
び滞留時間を決定する技法は、当該技術分野では周知である。そのような技法の説明は、
Ｊ．Ｇ．Ｗａｇｎｅｒ、１９９３、製薬科学者のための薬物動態学（Ｐｈａｒｍａｃｏｋ
ｉｎｅｔｉｃｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｓｔ
）、テクノミック出版社（Ｔｅｃｈｎｏｍｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ
Ｉｎｃ．）、ランカスター、ペンシルベニア州）に見出すことができる。

ペプチドのインビボ半減期の上昇は、この量における上昇の割合の範囲で最も良く表さ
れる。上昇の割合の範囲の下限は約４０％、約６０％、約８０、約１００％、約１５０％
または約２００％である。この範囲の上限は約６０％、約８０％、約１００％、約１５０
％または約２５０％以上である。

例示態様では、本発明はＰＥＧ化された濾胞刺激ホルモンを提供する（実施例９および
１０）。さらなる例示態様では、本発明はＰＥＧ化トランスフェリンを提供する（実施例
１３）。

本発明で使用する他の水溶性ポリマーの例には、限定するわけではないが直鎖もしくは
分枝ポリ（アルキレンオキシド）、ポリ（オキシエチル化ポリオール）、ポリ（オレフィ
ン性アルコール）およびポリ（アクリロモルホリン）、デキストラン、澱粉、ポリ（アミ
ノ酸）等を含む。
ｂ）水−不溶性ポリマー
本発明の結合物は１以上の水−不溶性ポリマーを含んでもよい。本発明のこの態様は、
治療用ペプチドを制御された様式で送達する賦形剤としての結合物の使用により具体的に
説明される。ポリマー性の薬剤送達系は当該技術分野では既知である。例えばＤｕｎｎ
ｅｔ ａｌ．、ポリマー性薬剤および薬剤送達系（ＰＯＬＹＭＥＲＩＣ ＤＲＵＧ ＡＮ
Ｄ ＤＲＵＧ ＤＥＬＩＶＥＲＹ ＳＹＳＴＥＭＳ）、ＡＣＳシンポジウムシリーズ、第
４６９巻、アメリカ化学学会、ワシントン、Ｄ．Ｃ．１９９１を参照にされたい。当業者
は実質的に任意の既知の薬剤送達系を本発明の結合物に応用できると考えるだろう。

代表的な水−不溶性ポリマーには限定するわけではないが、ポリホスファジン、ポリ（
ビニルアルコール）、ポリアミド、ポリカーボネート、ポリアルキレン、ポリアクリルア
ミド、ポリアルキレングリコール、ポリアルキレンオキシド、ポリアルキレンテレフタレ
ート、ポリビニルエーテル、ポリビニルエステル、ポリビニルハライド、ポリビニルピロ
リドン、ポリグリコリド、ポリシロキサン、ポリウレタン、ポリ（メチルメタクリレート
）、ポリ（エチルメタクリレート）、ポリ（ブチルメタクリレート）、ポリ（イソブチル
メタクリレート）、ポリ（ヘキシルメタクリレート）、ポリ（イソデシルメタクリレート
）、ポリ（ラウリルメタクリレート）、ポリ（フェニルメタクリレート）、ポリ（メチル
アクリレート）、ポリ（イソプロピルアクリレート）、ポリ（イソブチルアクリレート）
、ポリ（オクタデシル アクリレート）ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリ（エチレン
グリコール）、ポリ（エチレンオキシド）、ポリ（エチレンテレフタレート）、ポリ（ビ
ニルアセテート）、ポリビニルクロライド、ポリスチレン、ポリビニルピロリドン、プル
ロニックおよびポリビニルフェノールおよびそれらのコポリマーを含む。

本発明の結合物で使用する合成的に修飾された天然ポリマーには、限定するわけではな
いがアルキルセルロース、ヒドロキシアルキルセルロース、セルロースエーテル、セルロ
ースエステルおよびニトロセルロースを含む。広い種類の合成的に修飾された天然ポリマ
ーの特に好適な員には、限定するわけではないがメチルセルロース、エチルセルロース、
ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシブチ
ルメチルセルロース、セルロースアセテート、セルロースプロピオネート、セルロースア
セテートブチレート、セルロースアセテートフタレート、カルボキシメチルセルロース、
セルローストリアセテート、セルロース硫酸ナトリウム塩およびアクリル酸およびメタク
リル酸エステルおよびアルギン酸のポリマーを含む。

本明細書で検討するこれらのおよび他のポリマーは、シグマケミカル社（Ｓｉｇｍａ
Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．）（セントルイス、モンタナ州）、ポリサインエンス（Ｐｏｌ
ｙｓｃｉｅｎｃｅ）、ウァレントン、ペンシルベニア州）、アルドリッチ（Ａｌｄｒｉｃ
ｈ）（ミルウォーキー、ウィスコンシン州）、フルカ（ロンコンコーマ、ニューヨーク州
）およびバイオラッド（ＢｉｏＲａｄ）（リッチモンド、カリフォルニア州）のような市
販の供給源から容易に得ることができ、あるいはこれらの供給元から得たモノマーから標
準技術を使用して合成することができる。

本発明の結合物に使用する代表的な生分解性ポリマーには、限定するわけではないがポ
リラクチド、ポリグリコリドおよびそれらのコポリマー、ポリ（エチレンテレフタレート
）、ポリ（酪酸）、ポリ（吉草酸）、ポリ（ラクチド−コ−カプロラクトン）、ポリ（ラ
クチド−コ−グリコリド）、ポリ無水物、ポリオルトエステル、それらのブレンドおよび
コポリマーを含む。特別な使用は、コラーゲン、プルロニック等を含むもののようなゲル
を形成する組成物である。

本発明におけるポリマーの使用には、それらの構造の少なくとも一部の中に生物再吸収
性（ｂｉｏｒｅｓｏｒｂａｂｌｅ）分子を有する水不溶性材料を含む「ハイブリッド」ポ
リマーを含む。そのようなポリマーの例は、ポリマー鎖あたり生物再吸収性領域、親水性
領域および複数の架橋結合可能な官能基を有する水−不溶性コポリマーを含むものである
。

本発明の目的のために、「水−不溶性材料」には水または水を含有する環境中で実質的
に不溶性である材料を含む。すなわちコポリマーの特定領域またはセグメントは親水性ま
たは水溶性でもよく、全体としてポリマー分子は任意の実質的な限界まで水に溶解しない
。

本発明の目的のために、用語「生物再吸収性分子」には代謝または分解され、そして再
吸収および／または身体による正常な排出経路を介して排除され得る領域を含む。そのよ
うな代謝産物または分解産物は、好ましくは身体に対して実質的に非毒性である。

生物再吸収性領域は、コポリマー組成物を全体として水溶性にしない限り、疎水性また
は親水性のいずれかでよい。すなわち生物再吸収性領域はポリマーが全体として水−不溶
性を保持することの優先性に基づき選択される。したがって関連する特性、すなわち含ま
れる官能基の種類、および生物再吸収性領域の相対的割合、および親水性領域は、有用な
生物再吸収性組成物が水−不溶性を保持することを確実にするように選択される。

再吸収性ポリマーの例には、例えばポリ（α−ヒドロキシ−カルボン酸）／ポリ（オキ
シアルキレン）の合成的に生成される再吸収性ブロックコポリマーを含む（Ｃｏｈｎ ｅ
ｔ ａｌ．、米国特許第４，８２６，９４５号明細書を参照にされたい）。これらのコポ
リマーは架橋結合されず、そして水溶性であるので身体は分解したブロックコポリマー組
成物を排出することができる。Ｙｏｕｎｅｓ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔ
ｅｒ．Ｒｅｓ．２１：１３０１−１３１６（１９８７）；およびＣｏｈｎ ｅｔ ａｌ．
，Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．２２：９９３−１００９（１９８８）を参照
にされたい。

現在好適な生物再吸収性ポリマーには、ポリ（エステル）、ポリ（ヒドロキシ酸）、ポ
リ（ラクトン）、ポリ（アミド）、ポリ（エステル−アミド）、ポリ（アミノ酸）、ポリ
（無水物）、ポリ（オルトエステル）、ポリ（カーボネート）、ポリ（ホスファジン）、
ポリ（ホスホエステル）、ポリ（チオエステル）、多糖およびそれらの混合物から選択さ
れる１以上の成分を含む。より好ましくはさらに生物再吸収性ポリマーにはポリ（ヒドロ
キシ）酸成分を含む。ポリ（ヒドロキシ）酸の中で、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリ
カルプロン酸、ポリ酪酸、ポリ吉草酸およびそれらのコポリマーおよび混合物が好ましい
。

インビボで吸収される（「生物に吸収される」）フラグメントを形成することに加えて
、本発明の方法での使用に好適なポリマー性コーティングも、排出可能かつ／または代謝
可能なフラグメントを生成することができる。

高次コポリマーも本発明に使用することができる。例えば１９８４年、３月２０日に発
効されたＣａｓｅｙ ｅｔ ａｌ．、米国特許第４，４３８，２５３号明細書は、ポリ（
グリコール酸）およびヒドロキシル−末端化ポリ（アルキレングリコール）のエステル交
換反応から生産されるトリ−ブロックコポリマーを開示する。そのような組成物は再吸収
性モノフィラメント縫合糸として使用するために開示されている。そのような組成物の柔
軟性は、テトラ−ｐ−トリルオルトカーボネートのような芳香族オルトカーボネートをコ
ポリマー構造に包含させることにより制御される。

乳酸および／またはグリコール酸に基づく他のコーティングも利用することができる。
例えば１９９３年４月１３日に発効されたＳｐｉｎｕ、米国特許第５，２０２，４１３号
明細書は、ラクチドおよび／またはグリコリドのオリゴジオールまたはジアミン残基への
開環重合、続いてジイソシアネート、ジアシルクロライドまたはジクロロシランのような
二官能性化合物を用いた鎖延長により生産されたポリラクチドおよび／またはポリグリコ
リドを順次に配置した（ｏｒｄｅｒｅｄ）ブロックを有する生分解性マルチ−ブロックコ
ポリマーを開示する。

本発明に有用なコーティングの生物再吸収性領域は、加水分解的かつ／または酵素的に
開裂できるように設計することができる。本発明の目的のために、「加水分解的に開裂可
能な」とは、水中または水を含む環境下で加水分解に対するコポリマー、特に生物再吸収
性領域の感受性を指す。同様に本明細書で使用する「酵素的に開裂可能な」とは、内因性
または外因性酵素による開裂に対するコポリマー、特に生物再吸収性領域の感受性を指す
。

身体内に置かれた時、親水性領域は排出可能かつ／または代謝可能なフラグメントに処
理され得る。すなわち親水性領域には例えばポリエーテル、ポリアルキレンオキシド、ポ
リオール、ポリ（ビニルピロリドン）、ポリ（ビニルアルコール）、ポリ（アルキル オ
キサゾリン）、多糖、炭水化物、ペプチド、タンパク質およびそれらのコポリマーおよび
混合物を含むことができる。さらに親水性領域は例えばポリ（アルキレン）オキシドであ
ることもできる。そのようなポリ（アルキレン）オキシドには、例えばポリ（エチレン）
オキシド、ポリ（プロピレン）オキシドおよびそれらの混合物およびコポリマーを含むこ
とができる。

ヒドロゲルの成分であるポリマーも本発明に有用である。ヒドロゲルは比較的大量の水
を吸収することができるポリマー性材料である。ヒドロゲル形成化合物の例には限定する
わけではないが、ポリアクリル酸、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポリビニル
アルコール、ポリビニルピロリドン、ゼラチン、カラゲーナンおよび他の多糖、ヒドロキ
シエチレンメタクリル酸（ＨＥＭＡ）ならびにそれらの誘導体等を含む。安定で、生分解
性の、そして生物再吸収性であるヒドロゲルを生成することができる。さらにヒドロゲル
組成物は１以上のこれらの特性を現すサブユニットを含むことができる。

完全性が架橋結合を介して制御され得る生物適合性（ｂｉｏ−ｃｏｍｐａｔｉｂｌｅ）
ヒドロゲル組成物が知られており、そして現在、本発明の方法で使用するために好適であ
る。例えば１９９５年４月２５日に発効されたＨｕｂｂｅｌｌ ｅｔ ａｌ．、米国特許
第５，４１０，０１６号明細書および１９９６年６月２５日に発効された米国特許第５，
５２９，９１４号明細書は、２つの加水分解的に不安定な延長物の間に挟まれた水溶性の
中央ブロックセグメントを有する架橋結合したブロックコポリマーである水溶性の系を開
示する。そのようなコポリマーは光重合性アクリレート官能基を用いてさらにエンド−キ
ャップ化されている。架橋結合する時、これらの系はヒドロゲルになる。そのようなコポ
リマーの水溶性の中央ブロックには、ポリ（エチレングリコール）を含むことができ；一
方加水分解的に不安定な延長物はポリグリコール酸またはポリ乳酸のようなポリ（α−ヒ
ドロキシ酸）であることができる。Ｓａｗｈｎｅｙ ｅｔ ａｌ．，Ｍａｃｒｏｍｏｌｅ
ｃｕｌｅｓ ２６：５８１−５８７（１９９３）を参照にされたい。

別の好適な態様では、ゲルは熱可逆性ゲルである。プルロニック、コラーゲン、ゼラチ
ン、ヒアルロン酸、多糖、ポリウレタンヒドロゲル、ポリウレタン−尿素ヒドロゲルおよ
びそれらの組み合わせのような成分を含む熱可逆性ゲルが現在好適である。

さらに別の例示態様では、本発明の結合物はリポソームの成分を含む。リポソームは例
えば１９８５年、６月１１日に発効されたＥｐｐｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．、米国特許第
４，５２２，８１１号明細書に記載されているように、当該技術分野で既知の方法に従い
調製することができる。例えばリポソーム配合物は適当な脂質（１つまたは複数）（ステ
アロイルホスファチジルエタノールアミン、ステアロイル ホスファチジルコリン、アラ
カドイルホスファチジルコリンおよびコレステロールのような）を無機溶媒に溶解し、こ
れを次いで蒸発させ、容器の表面上の乾燥脂質の薄いフィルムを残しておくことにより調
製することができる。次いで活性化合物またはその製薬学的に許容され得る塩の水溶液を
容器に注ぐ。次いで容器を手で旋回して、容器の側面から脂質材料を解放し（ｆｒｅｅ）
、そして脂質凝集物を分配し、これによりリポソーム懸濁液を形成する。

上記に引用した微粒子および微粒子の調製法は例として提供され、そしてそれらは本発
明で使用する微粒子の範囲を定めることを意図しない。当業者は異なる方法により作成さ
れる多くの微粒子を本発明に使用できると考えるだろう。
ｃ）生体分子
別の好適な態様では、修飾された糖は生体分子を持つ。さらに好適な態様では、生体分
子は機能的タンパク質、酵素、抗原、抗体、核酸（例えばシングルヌクレオチドまたはヌ
クレオシド、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチドおよび１−およびより多い鎖の核酸
）、レクチン、レセプターまたはそれらの組み合わせである。

幾つかの好適な生体分子は本質的に非−蛍光性であり、またはアッセイで蛍光マーカー
として使用するには不適切な最少量の蛍光を発する。他の生体分子は蛍光でもよい。別の
物体（例えばＰＥＧ、生体分子、治療部分、診断部分等）の共有結合により修飾されてい
る外は天然に存在する糖の使用が適当である。例示態様では、生体分子である糖部分をリ
ンカーアームに結合し、そして糖−リンカーアームカセットを続いて本発明の方法を介し
てペプチドに結合する。

本発明の実施に有用な生体分子は、任意の供給源に由来することができる。生体分子は
天然な供給源から単離することができ、またはそれらは合成法により生成することができ
る。ペプチドは天然なペプチドまたは突然変異したペプチドであることができる。突然変
異は化学的な突然変異誘発法、部位−特異的突然変異誘発法または当業者に既知の突然変
異を導入する他の手段により行うことができる。本発明の実施で有用なペプチドには例え
ば、酵素、抗原、抗体およびレセプターを含む。抗体はポリクローナルまたはモノクロー
ナルでよく；完全またはフラグメントのいずれかであることができる。ペプチドは任意に
方向付けされた進化（ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ）のプログラムの産物であ
る。

天然に由来する、および合成ペプチドの両方および核酸も本発明と共に使用される；こ
れらの分子は糖残基成分または架橋結合剤に利用可能な反応基により結合することができ
る。例えばペプチドは反応性アミン、カルボキシル、スルフヒドリルまたはヒドロキシル
基を介して結合することができる。反応基はペプチド末端またはペプチド鎖に対して内部
に存在することができる。核酸は塩基（例えばエキソ環式アミン）上の反応基または糖部
分の利用可能なヒドロキシル基（例えば３'−または５'−ヒドロキシル）を介して結合
することができる。ペプチドおよび核酸鎖はさらに１以上の部位で誘導化されて、適切な
反応基を鎖に付けることが可能となる。例えばＣｈｒｉｓｅｙ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ
ｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２４：３０３１−３０３９（１９９６）を参照にされたい
。

さらに好適な態様では、生体分子を選択して本発明の方法により修飾したペプチドを特
異的組織に向け、これによりその組織に送達される非誘導化ペプチドの量に比べてペプチ
ドのその組織への送達を強化する。さらなに好適な態様では、選択した時間内に特異的な
組織へ送達される誘導化ペプチドの量は、誘導化により少なくとも約２０％、より好まし
くは少なくとも約４０％、そしてより好ましくは少なくともさらに約１００％まで強化す
る。現在、標的化に応用するために好適な生体分子には抗体、ホルモンおよび細胞表面レ
セプターのリガンドを含む。

現在好適な態様では、修飾基はタンパク質である。例示態様では、タンパク質はインタ
ーフェロンである。ヒトではインターフェロンは、ウイルスまたは二本鎖ＲＮＡで誘導し
た後にヒトの１次繊維芽細胞により分泌される抗ウイルス糖タンパク質である。インター
フェロンは治療薬として、例えば抗ウイルス剤および多発性硬化症の処置に興味深い。イ
ンターフェロン−βを考察した参考文献については、例えばYu, et al., J. Neuroimmuno
l., 64(1):91-100(1996); Schmidt, J., J. Neurosci. Res., 65(1): 59-67(2001); Wend
er, et al., Folia Neuropathol., 39(2):91-93 (2001); Martin, et al. Springer Semi
n. Immunopathol., 18(1):1-24(1996); Takane, et al., J. Pharmacol. Exp. Ther., 29
4(2):746-752 (2000); Sburlati, et al., Biotechnol . Prog., 14:189-192 (1998); Do
dd, et al., Biochimica et Biophysica Acta, 787:183-187(1984); Edelbaum, et al.,
J. Interferon Res., 12:449-453 (1992); Conradt, et al., J. Biol. Chem., 262(30):
14600-14605(1987); Civas, et al., Eur. J. Biochem., 173:311-316(1988); Demolder,
et al., J. Biotechnol., 32:179-189(1994); Sedmak, et al., Interferon Res., 9(Su
ppl 1): S61-S65 (1989); Kagawa, et al., J. Biol. Chem., 263(33): 17508-17515 (19
88); Hershenson, et al., U.S. Patent No. 4,894,330; Jayaram, et al., J. Interfer
on Res., 3(2): 177-180(1983); Menge, et al., Develop. Biol. Standard., 66: 391-4
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on-, see, Asano, et al., Eur. J. Cancer, 27(Suppl 4): S21-S25 (1991); Nagy, et a
l., Anticancer Research, 8(3): 467-470 (1988); Dron, et al., J. Biol. Regul. Hom
eost. Agents, 3(1): 13-19(1989); Habib, et al., Am. Surg., 67(3): 257-260 (3/200
1); および Sugyiama, et al., Eur. J. Biochem., 217: 921-927 (1993)を参照にされた
い。

インターフェロン結合物の例では、インターフェロンβはリンカーアームを介して第２
ペプチドに結合する。リンカーアームには完全なグリコシル連結基を含み、これを通して
本発明の方法を介して第２ペプチドに連結する。リンカーアームも場合により第２の完全
なグリコシル連結基も含み、これを通してインターフェロンに結合する。

別の例示態様では、本発明は濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）の結合物を提供する。ＦＳＨ
は糖タンパク質ホルモンである。例えばSaneyoshi, et al., Biol. Reprod., 65: 1686-1
690 (2001); Hakola, et al., J. Endocrinol., 158: 441-448 (1998); Stanton, et al.
, Mol. Cell. Endocrinol., 125:133-141 (1996); Walton, et al., J. Clin. Endocrino
l. Metab., 86(8): 3675-3685 (08/2001); Ulloa-Aguirre, et al., Endocrine, 11(3):
205-215 (12/1999); Castro-Fernadez, et al. I, J. Clin. Endocrinol. Matab., 85(12
): 4603-4610 (2000); Prevost, Rebecca R., Pharmacotherapy, 18(5): 1001-1010 (199
8); Linskens, et al., The FASEB Journal, 13: 639-645 (04/1999); Butnev, et al.,
Biol. Reprod., 58:458-469 (1998); Muyan, et al., Mol. Endo., 12(5): 766-772 (199
8); Min, et al., Endo. J., 43(5): 585-593 (1996); Boime, et al., Recent Progress
in Hormone Research, 34: 271-289 (1999); および Rafferty, et al., J. Endo., 145
: 527-533 (1995)を参照にされたい。ＦＳＨ結合物はインターフェロンについて上に記載
した様式に準じて形成することができる。

さらに別の例示態様では、結合物はエリトロポエチン（ＥＰＯ）を含む。ＥＰＯは低酸
素に対する反応を媒介し、そして赤血球の生産を刺激することが知られている。関連する
参考文献については、Ｃｅｒａｍｉ ｅｔ ａｌ．，Ｓｅｍｉｎａｒｓ ｉｎ Ｏｎｃｏ
ｌｏｇｙ，２８（２）（Ｓｕｐｐｌ８）：６６−７０（０４／２００１）を参照にされた
い。例示のＥＰＯ結合物は、インターフェロンの結合物に準じて形成される。

さらなる例示態様では、本発明はヒト顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）の結合物
を提供する。Ｇ−ＣＳＦはニュートロポイエティック（ｎｅｕｔｒｏｐｏｉｅｔｉｃ）前
駆細胞の機能的に成熟した好中球への増殖、分化および活性化を刺激する糖タンパク質で
ある。注入されたＧ−ＣＳＦは身体から急速に排除されることが知られている。例えばＮ
ｏｈｙｎｅｋ，ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ
．，３９：２５９−２６６（１９９７）；Ｌｏｒｄ ｅｔ ａｌ．，Ｃｌｉｎｉｃａｌ
Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，７（７）：２０８５−２０９０（０７／２００１）；
Ｒｏｔｏｎｄａｒｏ，ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
，１１（２）：１１７−１２８（１９９９）；およびＢｏｅｎｉｇ，ｅｔ ａｌ．，Ｂｏ
ｎｅ Ｍａｒｒｏｗ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，２８：２５９−２６４（２００
１）を参照にされたい。Ｇ−ＣＳＦの例示結合物は、インターフェロンの結合物について
上に記載したように調製される。当業者は多くの他のタンパク質が、限定するわけではな
いが表６（本明細書のいたるところに記載する）および図１、および個々の修飾スキーム
が提示されている図２７〜５１に掲げるペプチドを含む本発明の方法および組成物を使用
して、インターフェロンに結合することができると考えるだろう。

さらなる例示態様では、ビオチンとの結合物が提供される。すなわち例えば選択的にビ
オチン化されたペプチドは、１以上の修飾基を持つアビジンまたはストレプトアビジン部
分の結合により仕上げられる。

さらに好適な態様では、生体分子は本発明の方法により修飾したペプチドを特異的な細
胞内コンパートメントへ向けるために選択され、これにより組織に送達される非誘導化ペ
プチドの量に比べて細胞内コンパートメントへのペプチドの送達を強化する。さらに好適
な態様では、選択した時間内に特異的な細胞区画へ送達される誘導化ペプチドの量を誘導
化により、少なくとも約２０％、より好ましくは少なくとも約４０％、そしてさらにより
好ましくは少なくとも約１００％まで強化する。別の特に好適な態様では生体分子は、い
ったん内面化されると加水分解することができる開裂可能なリンカーによりペプチドに連
結される。細胞内ターゲッティングの応用に現在好適な生体分子には、トランスフェリン
、ラクトトランスフェリン（ラクトフェリン）、メラノトランスフェリン（ｐ９７）、セ
ルロプラスミンおよび二価のカチオン輸送体を含む。意図する連結には限定するわけでは
ないが、タンパク質−糖−リンカー−糖−タンパク質、タンパク質−糖−リンカー−タン
パク質およびそれらの多価形態、および薬剤がとりわけ低分子、ペプチド、脂質を含むタ
ンパク質−糖−リンカー−薬剤を含む。

治療薬の部位特異的および標的−指向的送達は、種々の悪性疾患および特定の神経障害
のようなヒトの広い種々の疾患を処置する目的に望ましい。そのような手順は薬剤のより
少ない副作用およびより高い効率で達成される。これらの送達系の設計は様々な原理に頼
るものであった。総説については、Ｇａｒｎｅｔｔ，Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅ
ｌｉｖｅｒｙ Ｒｅｖｉｅｗｓ ５３：１７１−２１６（２００１）を参照にされたい。

組織を特異的に標的するために、薬剤送達系の設計における１つの重要な考察。腫瘍表
面抗原の発見により、定めることができる表面抗原を提示している腫瘍細胞を特異的に標
的とし、そして殺す治療的取り組みを開発することが可能となった。悪性疾患の処置にお
いてヒトの臨床試験で効果が証明された３つの主要のクラスの治療用モノクローナル抗体
（ＭＡｂ）がある：（１）非結合ＭＡｂ、これは成長阻害および／またはアポトーシスを
直接誘導するか、あるいは抗腫瘍細胞傷害性を媒介するために宿主の防御メカニズムを間
接的に活性化する；（２）薬剤を結合したＭＡｂ、これは有力な細胞傷害性トキシンを腫
瘍細胞に優先的に送達し、したがって従来の化学療法に普通は付随する全身性の細胞傷害
性を最少とする；および（３）放射性同位体を結合したＭＡｂ、これは腫瘍に殺菌用量の
放射線を送達する。Ｒｅｆｆ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｃｏｎｔｒｏｌ ９：１５
２−１６６（２００２）による総説を参照にされたい。

悪性細胞を殺す力を持つＭＡｂを準備するために、ＭＡｂを植物、細菌または菌類の供
給源から得たトキシンに結合して、イムノトキシンと呼ばれるキメラタンパク質を形成す
ることができる。頻繁に使用される植物トキシンは２種類に分類される：（１）リシン、
アブリン、アメリカヤドリギ レクチン、およびモデクシン（ｍｏｄｅｃｃｉｎ）のよう
なホロトキシン（またはクラスＩＩリボソーム不活性化タンパク質）、および（２）アメ
リカヤマゴボウ抗ウイルスタンパク質（ＰＡＰ）、サポリン、Ｂｒｙｏｄｉｎ１、ボウガ
ニン（ｂｏｕｇａｎｉｎ）およびゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）のようなヘミトキシン（ク
ラスＩリボソーム不活性化タンパク質）。よく使用される細菌トキシンには、ジフテリア
トキシン（ＤＴ）およびシュードモナスのエキソトキシン（ＰＥ）を含む。Ｋｒｅｉｔｍ
ａｎ，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ
２：３１３−３２５（２００１）。

通例のイムノトキシンは、正常細胞への結合を最少にするために突然変異または化学的
に修飾したトキシンに化学的に結合したＭＡｂを含む。例にはＣＤ５を標的とする抗−Ｂ
４−ブロック化リシン；およびＣＤ２２を標的とするＲＦＢ４−脱グリコシル化リシンＡ
鎖を含む。より最近開発された組換えイムノトキシンは、組換えＤＮＡ技術を使用してタ
ンパク質トキシンに融合させた腫瘍抗原に対して向けられた抗体の可変領域からなるキメ
ラタンパク質である。トキシンはまた、正常組織結合部位は除去するが、その細胞傷害性
を保持するために、頻繁に遺伝的に修飾される。造血性ガン、グリオーマおよび胸部、結
腸、卵巣、膀胱および胃腸管のガンを含む種々の悪性疾患を処置するために、イムノトキ
シンの標的として多数の分化抗原、過剰発現したレセプターまたはガン−特異的抗原、例
えばＣＤ１９、ＣＤ２２、ＣＤ２０、ＩＬ−２レセプター（ＣＤ２５）、ＣＤ３３、ＩＬ
−４レセプター、ＥＧＦレセプターおよびその突然変異体、ＥｒＢ２、ルイス炭水化物、
メソセリン（ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｎ）、トランスフェリンレセプター、ＧＭ−ＣＳＦレセ
プター、Ｒａｓ、Ｂｃｒ−Ａｂ１およびｃ−Ｋｉｔが同定された。例えばＢｒｉｎｋｍａ
ｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｌ．Ｔｈｅｒ．１：６９３−７０
２（２００１）；Ｐｅｒｅｎｔｅｓｉｓ ａｎｄ Ｓｉｅｖｅｒｓ，Ｈｅｍａｔｏｌｏｇ
ｙ／Ｏｎｃｏｌｏｇｙ Ｃｌｉｎｉｃｓ ｏｆ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｅｉｃａ １５：
６７７−７０１（２００１）を参照にされたい。

放射性同位体に結合したＭＡｂは、ヒトの悪性疾患、特に造血性の悪性疾患を高レベル
の特異性および効力で処置する別の手段として使用される。最もよく使用される治療用の
同位体は、^１３１Ｉおよび^９０Ｙのような高エネルギー−エミッターである。最近、^２１
３Ｂｉ−標識抗−ＣＤ３３ヒト化ＭＡｂも、フェイズＩのヒト臨床試験で試験された。Ｒ
ｅｆｆ ｅｔ ａｌ．，同上。

多数のＭＡｂが治療目的に使用されてきた。例えば特定の造血性悪性疾患を処置するた
めに、リツキシマブ（ｒｉｔｕｘｉｍａｂ：Ｒｉｔｕｘａｎ（商標））、組換えキメラ抗
−ＣＤ２０ＭＡｂの使用が１９９７年にＦＤＡにより認可された。それからヒトのガンの
処置に治療的使用が認められた他のＭＡｂには：アレムツズマブ（ａｌｅｍｔｕｚｕｍａ
ｂ：Ｃａｍｐａｔｈ−１Ｈ（商標））、ＣＤ５２に対するヒト化ラット抗体；およびジェ
ンツズマブ オゾガマイシン（ｇｅｍｔｕｚｕｍａｂ ｏｚｏｇａｍｉｃｉｎ：Ｍｙｌｏ
ｔａｒｇ（商標））、カリーチマイシン（ｃａｌｉｃｈｅｍｉｃｉｎ）−結合ヒト化マウ
ス抗ＣＤ３３ＭＡｂを含む。現在、ＦＤＡはまた細胞傷害剤または照射、例えば放射標識
Ｚｅｖａｌｉｎ（商標）およびＢｅｘｘａｒ（商標）の部位特異的送達を目的にするため
の数種の他のＭＡｂの安全性および効力も調査している。Ｒｅｆｆ ｅｔ ａｌ．，同上
。

薬剤送達系の設計において２番目に重要な考察は、標的とする組織の治療薬への接近性
である。これは血液脳関門が高分子の拡散を妨害する中枢神経系（ＣＮＳ）の疾患を処置
する場合に特に関心のある事柄である。治療薬のＣＮＳへの効率的送達のために、血液脳
関門をバイパスするための幾つかの取り組みが開発された。

血漿から脳への鉄輸送メカニズムを解明することは、血液脳関門（ＢＢＢ）のバイパス
に有用な道具を提供した。トランスフェリンにより血漿中で輸送される鉄は、ほとんどす
べての種類の細胞に必須な成分である。脳は代謝プロセスに鉄を必要とし、そして脳の毛
細管内皮細胞に位置するトランスフェリンレセプターを通して、レセプターが媒介するト
ランスサイトーシスおよびエンドサイトーシスを介して鉄を受容する。Ｍｏｏｒ ａｎｄ
Ｍｏｒｇａｎ，Ｃｅｌｌｕｌａｒ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ
ｏｇｙ ２０：７７−９５（２０００）。トランスフェリン−トランスフェリンレセプタ
ー相互作用に基づく送達系が、ペプチド、タンパク質およびリポソームを脳に効率的に送
達するために確立された。例えばペプチドは脳によるより多い取り込みを達成するために
、トランスフェリンレセプターに対して向けられたＭａｂにカップリングすることができ
る、Ｍｏｏｓ ａｎｄ Ｍｏｒｇａｎ、同上。同様に、トランスフェリンレセプターに向
けられたＭＡｂにカップリングした時、血液脳関門全域の塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂ
ＦＧＦ）の輸送が強化される。Ｓｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ
Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔ
ｉｃｓ ３０１：６０５−６１０（２００２）；Ｗｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｄｒｕｇ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ １０：２３９−２４５（２００２）。さらに化学
療法剤、ドキソルビシンのＣ６グリオーマへの効果的輸送のためのリポソーム送達系が報
告され、ここでトランスフェリンはリポソームＰＥＧ鎖の遠位末端に結合された。Ｅａｖ
ａｒｏｎｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．５１：１０−１４
（２０００）。多数の米国特許もトランスフェリン−トランスフェリンレセプター相互作
用に基づき血液−脳関門をバイパスする送達法に関する。例えば米国特許第５，１５４，
９２４号；同第５，１８２，１０７号；同第５，５２７，５２７号；同第５，８３３，９
８８号；同第６，０１５，５５５号明細書を参照にされたい。

血液脳関門をバイパスするための製剤用に適する他の結合パートナーがある。例えば米
国特許第５，６７２，６８３号、同第５，９７７，３０７号明細書および国際公開第９５
／０２４２１号パンフレットは、血液脳関門をわたる神経製剤を送達する方法に関し、こ
こで薬剤は脳の毛細管内皮細胞レセプターと反応性のリガンドとの融合タンパク質の状態
で投与される；国際公開第９９／００１５０号パンフレットは、血液脳関門をわたる薬剤
の輸送が、ヒトのインスリンレセプターに対して向けられたＭＡｂとの結合により促進さ
れる薬剤送達系を記載する；国際公開第８９／１０１３４号パンフレットは、脳へ親水性
の神経ペプチドを導入する手段として、比較的高速で血液脳関門をわたることができるペ
プチドおよびトランスサイトーシスできない親水性の神経ペプチドを含むキメラペプチド
を開示する；国際公開第０１／６０４１１ Ａ１号パンフレットは、製薬学的な有効成分
を脳に容易に輸送することができる製薬学的組成物を提供する。有効成分は結合物として
使用されるヒバーネーション（ｈｉｂｅｒｎａｔｉｏｎ）−特異的タンパク質に結合させ
、そして甲状腺ホルモンまたは甲状腺ホルモンの生産を促進する物質と共に投与される。
さらに血液脳関門をバイパスするために、別の薬剤送達経路が調査された。例えば結合を
必要としない治療薬の鼻内送達は別の送達法の可能性を示した（Ｆｒｅｙ，２００２，Ｄ
ｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２（５）：４６−４９）。

血液脳関門をわたる薬剤の輸送を促進することに加えて、トランスフェリン−トランス
フェリンレセプター相互作用は、多くの腫瘍細胞がそれらの表面上にトランスフェリンレ
セプターを過剰発現するので、特定の腫瘍細胞の特異的標的化にも有用である。この方法
はトランスフェリン結合物を介してＫ５６２細胞に生物活性高分子を送達するために（Ｗ
ｅｌｌｈｏｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａ
ｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２６６：４３０９−４３１４（１９９１））、そしてトランス
フェリン結合物を介して腸細胞−様Ｃａｃｏ−２細胞にインスリンを送達するために（Ｓ
ｈａｈ ａｎｄ Ｓｈｅｎ，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓ
ｃｉｅｎｃｅｓ ８５：１３０６−１３１１（１９９６））使用されてきた。

さらにラクトトランスフェリンレセプター、メラノトランスフェリン、セルロプラスミ
ンのような種々の鉄輸送タンパク質の機能、および二価のカチオン輸送体およびそれらの
発現パターンについてより知られるようになったので、鉄輸送メカニズムに関与する幾つ
かのタンパク質（例えばメラノトランスフェリン）またはそれらのフラグメントは、血液
脳関門をわたる治療薬の輸送、または特異的組織のターゲッティングを支援するために同
様に効果的であることが分かった（国際公開第０２／１３８４３Ａ２号、同第０２／１３
８７３Ａ２号パンフレット）。薬剤送達において、結合物としての鉄の取り込みが関与す
るトランスフェリンおよび関連タンパク質の使用に関する総説は、Ｌｉ ａｎｄ Ｑｉａ
ｎ，Ｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｒｅｖｉｅｗｓ ２２：２２５−２５０（２０
０２）を参照にされたい。

治療薬の組織−特異的送達の概念は、トランスフェリンとトランスフェリンレセプター
またはそれらの関連タンパク質との間の相互作用を越える。例えば石化（ｍｉｎｅｒａｌ
ｉｚｅｄ）した組織へのタンパク質の送達を改善するために、タンパク質が骨を探す（ｂ
ｏｎｅ−ｓｅｅｋｉｎｇ）アミノビホスフェートと結合した骨−特異的送達系が記載され
た。Ｕｌｕｄａｇ ａｎｄ Ｙａｎｇ，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｐｒｏｇ．１８：６０４
−６１１（２００２）。この話題に関する総説は、Ｖｙａｓ ｅｔ ａｌ．，Ｃｒｉｔｉ
ｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ
Ｓｙｓｔｅｍ １８：１−７６（２００１）を参照にされたい。

種々のリンカーを、治療薬の特異的送達の目的で生物結合物の生成法に使用することが
できる。適当なリンカーには、例えば酸−触媒型の解離により開裂され得る、あるいは非
−開裂性のホモ−およびヘテロ二官能性架橋結合試薬を含む（例えば、Ｓｒｉｎｉｖａｓ
ａｃｈａｒ ａｎｄ Ｎｅｖｉｌｌｅ，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８：２５０１−２
５０９（１９８９）；Ｗｅｌｌｈｏｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏ
ｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２６６：４３０９−４３１４（１９９
１）を参照にされたい）。ビオチンおよびアビジン／ストレプトアビシンのような多くの
既知の結合パートナー間の相互作用も、治療薬と治療薬の特異的かつ効果的送達を確実と
する結合パートナーとを連結する手段として使用することができる。本発明の方法を使用
して、タンパク質は分子を結合物として細胞内コンパートメントへ送達するために使用す
ることができる。リガンド結合後に内面化される、特異的な細胞表面レセプターに結合す
るタンパク質、ペプチド、ホルモン、サイトカイン、低分子等は、結合した治療用化合物
の細胞内ターゲッティングに使用することができる。典型的にはレセプター−リガンド複
合体は、特異的な細胞コンパートメントへ送達される細胞内小胞中に内面化され、これら
のコンパートメントには限定するわけではないがレセプターにより標的化される細胞内の
位置に依存して核、ミトコンドリア、ゴルジ、ＥＲ、リソソームおよびエンドソームを含
む。レセプターリガンドを所望する分子に結合することにより、薬剤はレセプター−リガ
ンド複合体で運ばれ、そしてレセプターにより通常は標的とされる細胞内の位置へ送達さ
れる。したがって薬剤は疾患の処置が必要とされている細胞の特異的な細胞内の位置へと
送達され得る。

多くのタンパク質が治療薬を特異的な組織および器官を標的とするために使用すること
ができる。標的化タンパク質には限定するわけではないが増殖因子（とりわけＥＰＯ、Ｈ
ＧＨ、ＥＧＦ、神経成長因子、ＦＧＦ）、サイトカイン（とりわけＧＭ−ＣＳＦ、Ｇ−Ｃ
ＳＦ、インターフェロンファミリー、インターロイキン）、ホルモン（とりわけＦＳＨ、
ＬＨ、ステロイドファミリー、エストロゲン、コルチコステロイド、インスリン）、血清
タンパク質（とりわけアルブミン、リポタンパク質、フェトプロテイン、ヒト血清タンパ
ク質、抗体および抗体のフラグメント）、およびビタミン（とりわけ葉酸、ビタミンＣ、
ビタミンＡ）を含む。ほとんどの細胞型上のレセプターに特異的な標的化剤も利用可能で
ある。

企図する連結の立体配置には、限定するわけではないがタンパク質−糖−リンカー−糖
−タンパク質およびそれらの多価の形態、タンパク質−糖−リンカー−タンパク質および
それらの多価の形態、タンパク質−糖−リンカー−治療薬（ここで治療薬には限定するわ
けではないが低分子、ペプチドおよび脂質を含む）を含む。幾つかの態様では、いったん
内面化されれば加水分解され得る加水分解可能なリンカーを使用する。酸性ｐＨを有する
エンドソームまたはリソソーム中にタンパク質結合物が内面化される場合、酸に不安定な
リンカーを使用することは有利となり得る。いったんエンドソームまたはリソソーム中に
内面化されれば、リンカーは加水分解され、そして治療薬が標的剤から放出される。

例示態様では、トランスフェリンは、患者中でトランスフェリンレセプターを提示する
細胞を標的することが望まれる酵素にリンカーを介して連結される。患者は例えばその特
定の酵素について酵素代替療法を必要とすることができる。特に好適な態様では、酵素は
リソソーム蓄積疾患の患者に欠けているものである（表４を参照にされたい）。いったん
循環に入れば、トランスフェリン−酵素結合物はトランスフェリンレセプターに結合し、
そして早期にエンドソームにより内面化される（Ｘｉｎｇ ｅｔ ａｌ．，１９９８，Ｂ
ｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．３３６：６６７；Ｌｉ ｅｔ ａｌ．，２００２，Ｔｒｅｎｄｓ ｉ
ｎ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｓｃｉ．２３：２０６；Ｓｕｈａｉｌａ ｅｔ ａｌ．，１９
９８，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７３：１４３５５）。トランスフェリンに関する他の
企図する標的剤には、限定するわけではないがラクトトランスフェリン（ラクトフェリン
）、メラノトランスフェリン（ｐ９７）、セルロプラスミンおよび二価カチオン輸送体を
含む。

別の例示態様では、トランスフェリン−ジストロフィン結合物がトランスフェリン経路
によりエンドソームに入る。いったん入れば、ジストロフィンが加水分解可能なリンカー
により放出され、これは次いで必要とされる細胞内コンパートメントに取り込まれること
ができる。この態様は、トランスフェリンに結合された機能的ジストロフィンペプチドを
用いて、遺伝的に欠損性のジストロフィン遺伝子および／またはタンパク質を補充するこ
とにより筋ジストロフィーの患者を処置するために使用することができる。
Ｅ．治療部分
別の好適な態様では、修飾された糖は治療部分を含む。当業者は治療部分と生体分子の
範疇の間で重複する部分があると考えるだろう；多くの生体分子が治療特性または潜在性
を有する。

治療部分は臨床的使用がすでに許容された作用物質であることができ、あるいはそれら
はその使用が実験的であるか、またはその活性もしくは作用メカニズムが調査中の薬剤で
あることができる。治療部分は所定の疾患状態で証明された作用を有することができ、あ
るいは所定の疾患状態で望まれる作用を示すと仮定されるだけであることができる。好適
な態様では、治療部分は選択した組織と相互作用するそれらの能力についてスクリーニン
グされている化合物である。本発明の方法を実施するために有用な治療部分は、種々の薬
理学的活性を有する薬剤の広範な種類からの薬剤を含む。幾つかの態様では、糖ではない
治療部分を使用することが好ましい。この好適例の例外は、ＰＥＧ、生体分子、治療部分
、診断分子等のような別の物体と共有結合することにより修飾された糖である。別の例示
態様では、治療用の糖部分をリンカーアームと結合させ、そして続いて糖−リンカーアー
ムカセットを本発明の方法を介してペプチドに結合させる。

治療および診断薬を様々な他の種に結合する方法は、当業者には周知である。例えばＨ
ｅｒｍａｎｓｏｎ，バイオコンジュゲート技術（ＢＩＯＣＯＮＪＵＧＡＴＥ ＴＥＣＨＮ
ＩＱＵＥＳ）、アカデミック出版、サンディエゴ、１９９６；およびＤｕｎｎ ｅｔ ａ
ｌ．，編集、ポリマー性薬剤および薬剤送達系（ＰＯＬＹＭＥＲＩＣ ＤＲＵＧＳ ＡＮ
Ｄ ＤＲＵＧ ＤＥＬＩＶＥＲＹ ＳＹＳＴＥＭＳ）、ＡＣＳシンポジウムシリーズ、第
４６９巻、アメリカ化学学会、ワシントン、Ｄ．Ｃ．１９９１を参照にされたい。

例示態様では、治療部分は選択した条件下で開裂する連結を介して修飾された糖に結合
させる。条件の例には、限定するわけではないが、選択されたｐＨ（例えば胃、腸、エン
ドサイトーシスの液胞）、活性な酵素の存在（例えばエステラーゼ、プロテアーゼ、レダ
クターゼ、オキシダーゼ）、光、熱等を含む。多くの開裂可能な基が当該技術分野では知
られている。例えばJung et al., Biochem. Biophys. Acta, 761: 152-162 (1983); Josh
i et al., J. Biol. Chem., 265: 14518-14525 (1990); Zarling et al., J. Immunol.,
124: 913-920 (1980); Bouizar et al., Eur. J. Biochem., 155: 141-147 (1986); Park
et al., J. Biol. Chem., 261: 205-210 (1986); Browning et al., J. Immunol., 143:
1859-1867 (1989)を参照にされたい。

有用な治療部分の種類には、限定するわけではないが非−ステロイド性抗−炎症剤（Ｎ
ＳＡＩＤＳ）を含む。ＮＳＡＩＤＳは例えば以下の範疇から選択することができる：（例
えばプロピオン酸誘導体、酢酸誘導体、フェナム酸誘導体、ビフェニルカルボン酸誘導体
およびオキシカム（ｏｘｉｃａｍｓ））；ヒドロコルチゾン等を含むステロイド性抗−炎
症剤；アジュバント：抗−ヒスタミン剤（例えばクロロフェニラミン（ｃｈｌｏｒｐｈｅ
ｎｉｒａｍｉｎｅ）、トリプロリジン（ｔｒｉｐｒｏｌｉｄｉｎｅ））；鎮咳剤（例えば
デキストロメトルファン（ｄｅｘｔｒｏｍｅｔｈｏｒｐｈａｎ）、コデイン（ｃｏｄｅｉ
ｎ）、カラミフェン（ｃａｒａｍｉｐｈｅｎ）、およびカルベタペンタン（ｃａｒｂｅｔ
ａｐｅｎｔａｎｅ）；止痒剤（例えばメトジラジン（ｍｅｔｈｄｉｌａｚｉｎｅ）および
トリメプラジン（ｔｒｉｍｅｐｒａｚｉｎｅ）；抗コリン作用剤（例えばスコポラミン（
ｓｃｏｐｏｌａｍｉｎｅ）、アトロピン（ａｔｒｏｐｉｎｅ）、ホマトロピン（ｈｏｍａ
ｔｒｏｐｉｎｅ）、レボドパ（ｌｅｖｏｄｏｐａ）；嘔吐抑制剤および抗めまい剤（例え
ばシクリジン（ｃｙｃｌｉｚｉｎｅ）、メクリジン（ｍｅｃｌｉｚｉｎｅ）、クロルプロ
マジン（ｃｈｌｏｒｐｒｏｍａｚｉｎｅ）、ブクリジン（ｂｕｃｌｉｚｉｎｅ）；食欲減
退剤（例えばベンズフェタミン（ｂｅｎｚｐｈｅｔａｍｉｎｅ）、フェンテルミン（ｐｈ
ｅｎｔｅｒｍｉｎｅ）、クロルフェンテルミン（ｃｈｌｏｒｐｈｅｎｔｅｒｍｉｎｅ）お
よびフェンフルラミン（ｆｅｎｆｌｕｒａｍｉｎｅ）；中枢刺激剤（例えばアンフェタミ
ン（ａｍｐｈｅｔａｍｉｎｅ）、メタンフェタミン（ｍｅｔｈａｍｐｈｅｔａｍｉｎｅ）
、デクストロアンフェタミン（ｄｅｘｔｒｏａｍｐｈｅｔａｍｉｎｅ）およびメチルフェ
ニデート（ｍｅｔｈｙｌｐｈｅｎｉｄａｔｅ））；抗不整脈剤（例えばプロパノルオール
（ｐｒｏｐａｎｏｌｏｌ）、プロカインアミド（ｐｒｏｃａｉｎａｍｉｄｅ）、ジソピラ
ミド（ｄｉｓｏｐｙｒａｍｉｄｅ）、キニジン（ｑｕｉｎｉｄｉｎｅ）、エンカイニド（
ｅｎｃａｉｎｉｄｅ）；β−アドレナリン遮断薬（例えばメトプロロール（ｍｅｔｏｐｒ
ｏｌｏｌ）、アセブトロール（ａｃｅｂｕｔｏｌｏｌ）、ベタキソロール（ｂｅｔａｘｏ
ｌｏｌ）、ラベタロール（ｌａｂｅｔａｌｏｌ）およびチモロール（ｔｉｍｏｌｏｌ）；
強心剤（例えばミルリノン（ｍｉｌｒｉｎｏｎｅ）、アムリノン（ａｍｒｉｎｏｎｅ）お
よびドブタミン（ｄｏｂｕｔａｍｉｎｅ）；降圧剤（例えばエナラプリル（ｅｎａｌａｐ
ｒｉｌ）、クロニジン（ｃｌｏｎｉｄｉｎｅ）、ヒドララジン（ｈｙｄｒａｌａｚｉｎｅ
）、ミノキシジル（ｍｉｎｏｘｉｄｉｌ）、グアナドレル（ｇｕａｎａｄｒｅｌ）、グア
ネチジン（ｇｕａｎｅｔｈｉｄｉｎｅ）；利尿剤（例えばアミロライド（ａｍｉｌｏｒｉ
ｄｅ）およびヒドロクロロチアジド（ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｏｔｈｉａｚｉｄｅ）；冠血
管拡張薬（例えばジルチアゼム（ｄｉｌｔｉａｚｅｍ）、アミオダロン（ａｍｉｏｄａｒ
ｏｎｅ）、イソクスプリン（ｉｓｏｘｓｐｕｒｉｎｅ）、ナイリドリン（ｎｙｌｉｄｒｉ
ｎ）、トラゾリン（ｔｏｌａｚｏｌｉｎｅ）およびベラパミル（ｖｅｒａｐａｍｉｌ）；
血管収縮薬（例えばジヒドロエルゴタミン（ｄｉｈｙｄｒｏｅｒｇｏｔａｍｉｎｅ）、エ
ルゴタミン（ｅｒｇｏｔａｍｉｎｅ）およびメチルセルギド（ｍｅｔｈｙｌｓｅｒｇｉｄ
ｅ）；抗潰瘍剤（例えばラニチジン（ｒａｎｉｔｉｄｉｎｅ）およびシメチジン（ｃｉｍ
ｅｔｉｄｉｎｅ）；麻酔薬（例えばリドカイン（ｌｉｄｏｃａｉｎｅ），ブピバカイン（
ｂｕｐｉｖａｃａｉｎｅ）、クロロプロカイン（ｃｈｌｏｒｏｐｒｏｃａｉｎｅ）、ジブ
カイン（ｄｉｂｕｃａｉｎｅ）；抗鬱剤（例えばイミプラミン（ｉｍｉｐｒａｍｉｎｅ）
、デシプラミン（ｄｅｓｉｐｒａｍｉｎｅ）、アミトリプチリン（ａｍｉｔｒｙｐｔｉｌ
ｉｎｅ）、ノルトリプチリン（ｎｏｒｔｒｙｐｔｉｌｉｎｅ）；精神安定剤および鎮静剤
（例えばクロルジアゼポキシド（ｃｈｌｏｒｄｉａｚｅｐｏｘｉｄｅ）、ベナシチジン（
ｂｅｎａｃｙｔｙｚｉｎｅ）、ベンズキナミド（ｂｅｎｚｑｕｉｎａｍｉｄｅ）、フルラ
ゼパム（ｆｌｕｒａｚｅｐａｍ）、ヒドロキシジン（ｈｙｄｒｏｘｙｚｉｎｅ）、ロキサ
ピン（ｌｏｘａｐｉｎｅ）およびプロマジン（ｐｒｏｍａｚｉｎｅ））；抗精神病薬（例
えばクロルプロチキセン（ｃｈｌｏｒｐｒｏｔｈｉｘｅｎｅ）、フルフェナジン（ｆｌｕ
ｐｈｅｎａｚｉｎｅ）、ハロペリドール（ｈａｌｏｐｅｒｉｄｏｌ）、モリンドン（ｍｏ
ｌｉｎｄｏｎｅ）、チオリダジン（ｔｈｉｏｒｉｄａｚｉｎｅ）およびトリフルオペラジ
ン（ｔｒｉｆｌｕｏｐｅｒａｚｉｎｅ）；抗微生物剤（抗バクテリア、抗菌・カビ、抗原
生生物および抗ウイルス剤）。

有用な治療部分の種類にはアジュバントを含む。アジュバントは例えば、とりわけ当該
技術分野で周知のキーホールリンペットヘモシアニン結合物、モノホスホリル脂質Ａ、マ
イコプラズマ−由来リポペプチドＭＡＬＰ−２、コレラトキシンＢサブユニット、大腸菌
（Ｅｓｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）熱不安定性トキシン、破傷風トキソイドに由来する
ユニバーサルＴヘルパーエピトープ、インターロイキン−１２、ＣｐＧオリゴデオキシヌ
クレオチド、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド、シクロデキストリン、スク
ワレン、アルミニウム塩、髄膜炎菌の外膜小胞（ＯＭＶ）、モンタニド（ｍｏｎｔａｎｉ
ｄｅ）ＩＳＡ、ＴｉｔｅｒＭａｘ（商標）（モンタナ州、セントルイスのシグマから入手
可能）、ニトロセルロース吸着、ＱｕｉｌＡのような免疫−刺激複合体、Ｇｅｒｂｕ（商
標）アジュバント（ゲルブ バイオテクニーク（Ｇｅｒｂｕ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｋ）、
キルヒバルド、ドイツ）、トレオニルムラミルジペプチド、チモシン アルファ、ブピバ
カイン、ＧＭ−ＣＳＦ、不完全フロインドアジュバント、ＭＴＰ−ＰＥ／ＭＦ５９（チバ
／ガイギー（Ｃｉｂａ／Ｇｅｉｇｙ）、バーゼル、スイス）、ポリホスファゼン、セッケ
ンボクの木（Ｑｕｉｌｌａｊａ ｓａｐｏｎａｒｉａ）に由来するサポニンおよびＳｙｎ
ｔｅｘアジュバント製剤（バイオカイン（Ｂｉｏｃｉｎｅ）、エミリーヴァレ、カリフォ
ルニア州）から選択することができる。

本発明の組成物に包含するために好適な抗微生物剤には、例えばβ−ラクタム剤、キノ
ロン剤、シプロフロキサシン、ノルフロキサシン、テトラサイクリン、エリスロマイシン
、アミカシン、トリクロサン、ドキシサイクリン、カプレオマイシン、クロルヘキシジン
、クロルテトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、クリンダマイシン、エタムブトー
ル、ヘキサミジンイソチオネート、メトロニダゾール、ペンタミジン、ゲンタマイシン、
カナマイシン、リネオマイシン、メタサイクリン、メタンアミド、ミノサイクリン、ネオ
マイシン、ネチルマイシン、パロモマイシン、ストレプトマイシン、トブラマイシン、ミ
コナゾールおよびアマンタジンの製薬学的に許容され得る塩を含む。

本発明の実施に使用する他の薬剤部分には、抗癌剤（例えばアンチアンドロゲン（例え
ばロイプロリド（ｌｅｕｐｒｏｌｉｄｅ）またはフルタミド（ｆｌｕｔａｍｉｄｅ））、
殺細胞剤（例えばアドリアマイシン、ドキソルビシン、タキソール、シクロホスファミド
、ブスルファン、シスプラチン、β−２−インターフェロン）抗−エストロゲン剤（例え
ばタモキシフェン）、代謝拮抗物（例えばフルオロウラシル、メトトレキセート、メルカ
プトプリン、チオグアニン）を含む。またこの分類に含まれるのは、診断および治療の両
方のための放射性同位体に基づく作用物質およびリシンのような結合トキシン、ゲルダナ
マイシン、ミタンシン（ｍｙｔａｎｓｉｎ）、ＣＣ−１０６５、Ｃ−１０２７、デュオカ
ルマイシン、カリーチマイシンおよび関連する構造およびそれらの類似体である。

治療部分はホルモン（例えばメドロキシプロゲステロン、エストラジオール、ロイプロ
リド、メゲステロール、オクトレチドまたはソマトスタチン）；筋弛緩剤（例えばシンナ
メドリン（ｃｉｎｎａｍｅｄｒｉｎｅ）、シクロベンザプリン（ｃｙｃｌｏｂｅｎｚａｐ
ｒｉｎｅ）、フラボキセート（ｆｌａｖｏｘａｔｅ）、オルフェナドリン（ｏｒｐｈｅｎ
ａｄｒｉｎｅ）、パパヴェリン（ｐａｐａｖｅｒｉｎｅ）、メベヴェリン（ｍｅｂｅｖｅ
ｒｉｎｅ）、イダヴェリン（ｉｄａｖｅｒｉｎｅ）、リトドリン（ｒｉｔｏｄｒｉｎｅ）
、ジフェノキシレート（ｄｉｐｈｅｎｏｘｙｌａｔｅ）、ダントロレン（ｄａｎｔｒｏｌ
ｅｎｅ）およびアズモレン（ａｚｕｍｏｌｅｎ））；抗痙剤；骨−活性剤（例えばジホス
ホネートおよびホスホノアルキルホスフィネート剤化合物）；内分泌調節（ｍｏｄｕｌａ
ｔｉｎｇ）物質（例えば、避妊薬（例えばエチノジオール（ｅｔｈｉｎｏｄｉｏｌ）、エ
チニルエストラジオール、ノレチンドロン（ｎｏｒｅｔｈｉｎｄｒｏｎｅ）、メストラノ
ール（ｍｅｓｔｒａｎｏｌ）、デソゲステレル（ｄｅｓｏｇｅｓｔｒｅｌ）、メドロキシ
プロゲステロン（ｍｅｄｒｏｘｙｐｒｏｇｅｓｔｅｒｏｎｅ））、糖尿病の調節物質（例
えばグリブリド（ｇｌｙｂｕｒｉｄｅ）またはクロルプロパミド（ｃｈｌｏｒｐｒｏｐａ
ｍｉｄｅ）、テストラクトンまたはスタノゾロールのような同化産物、アンドロゲン類（
例えばメチルテストステロン、テストステロンまたはフルオキシメステロン）、抗利尿物
（例えばデスモプレッシン（ｄｅｓｍｏｐｒｅｓｓｉｎ）およびカルシトニン（ｃａｌｃ
ｉｔｏｎｉｎ））であることができる。

また本発明に使用するのはエストロゲン（例えばジエチルシチルベステロール）、グル
ココルチコイド（例えばトリアムシノロン、ベタメサゾン等）、およびノレチンドロン、
エチノジオール、ノレエチンドロン、レボノルゲストレルのようなプロゲステロン；甲状
腺剤（例えばリオチロニン（ｌｉｏｔｈｙｒｏｎｉｎｅ）またはレボチロキシン（ｌｅｖ
ｏｔｈｙｒｏｘｉｎｅ）または抗−甲状腺剤（例えばメチマゾール（ｍｅｔｈｉｍａｚｏ
ｌｅ））；抗過プロラクチン血症剤（例えばカベルゴリン（ｃａｂｅｒｇｏｌｉｎｅ）；
ホルモンサプレッサー（例えばダナゾール（ｄａｎａｚｏｌ）またはゴセレリン（ｇｏｓ
ｅｒｅｌｉｎ））、子宮収縮剤（例えばメチルエルゴノビン（ｍｅｔｈｙｌｅｒｇｏｎｏ
ｖｉｎｅ）またはオキシトシン（ｏｘｙｔｏｃｉｎ）およびミオプロストール（ｍｉｏｐ
ｒｏｓｔｏｌ）、アルプロスタジル（ａｌｐｒｏｓｔａｄｉｌ）またはジノプロストーン
（ｄｉｎｏｐｒｏｓｔｏｎｅ）のようなプロスタグランジンである。

他の有用な修飾基には免疫調節剤（例えば抗ヒスタミン剤、ロドキサミド（ｌｏｄｏｘ
ａｍｉｄｅ）および／またはクロモリン（ｃｒｏｍｏｌｙｎ）のようなマスト細胞安定化
剤、ステロイド（例えばトリアムシノロン（ｔｒｉａｍｃｉｎｏｌｏｎｅ）、ベクロメタ
ゾン（ｂｅｃｌｏｍｅｔｈａｚｏｎｅ）、コルチゾン（ｃｏｒｔｉｓｏｎｅ）、デキサメ
タゾン（ｄｅｘａｍｅｔｈａｓｏｎｅ）、プレドニゾロン（ｐｒｅｄｎｉｓｏｌｏｎｅ）
、メチルプレドニゾロン（ｍｅｔｈｙｌｐｒｅｄｎｉｓｏｌｏｎｅ）、ベクロメタゾン（
ｂｅｃｌｏｍｅｔｈａｓｏｎｅ）またはクロベタゾル（ｃｌｏｂｅｔａｓｏｌ））、ヒス
タミンＨ２アンタゴニスト（例えばファモチジン（ｆａｍｏｔｉｄｉｎｅ）、シメチジン
（ｃｉｍｅｔｉｄｉｎｅ）、ラニチジン（ｒａｎｉｔｉｄｉｎｅ））、免疫抑制剤（例え
ばアザチオプリン（ａｚａｔｈｉｏｐｒｉｎｅ）、シクロスポリン（ｃｙｃｌｏｓｐｏｒ
ｉｎ））等を含む。

スリンダク（ｓｕｌｉｎｄａｃ）、エトドラク（ｅｔｏｄｏｌａｃ）、ケトプロフェン
（ｋｅｔｏｐｒｏｆｅｎ）およびケトロラク（ｋｅｔｏｒｏｌａｃ）のような抗炎症活性
を有する群も使用する。本発明と一緒に使用する他の薬剤は、当業者には明らかである。
Ｆ．修飾された糖の調製法
本発明の結合物を形成するために有用な修飾された糖を本明細書で検討する。この検討
は説明の簡明さのために水溶性ポリマーで修飾された糖の調製に焦点をあてる。特にこの
検討はポリ（エチレングリコール）部分を含む修飾された糖の調製に焦点をあてる。当業
者は本明細書に記載する方法が修飾された糖の調製に広く応用可能であり、したがってこ
の検討は本発明の範囲を限定すると解釈すべきでないと考えるだろう。

一般に糖部分および修飾基は、典型的には連結法により新規な有機官能基または非反応
性種に転移される反応基の使用を介して一緒に連結される。糖の反応性官能基（１つまた
は複数）は、糖部分の任意の位置に位置する。本発明の実質に有用な反性基および反応の
種類は、一般にバイオコンジュゲート（ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）化学の分野で周知な
ものである。反応性糖部分を用いて利用可能な現在好適な種類の反応は、比較的穏和な条
件下で進行するものである。これらには限定するわけではないが、求核性置換（例えばア
ミンおよびアルコールとアシルハライド、活性エステルとの反応）、求電子置換（例えば
エナミン反応）、および炭素−炭素および炭素−ヘテロ原子多重結合への付加（例えばマ
イケル反応、ディールス−アルダー付加）を含む。これらのおよび他の有用な反応は、例
えばＳｍｉｔｈ ａｎｄ Ｍａｒｃｈ、進歩した有機化学（ＡＤＶＡＮＣＥＤ ＯＲＧＡ
ＮＩＣ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ）、第５版、ジョン ウィリー＆サンズ、ニューヨーク、２
００１；Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ、バイオコンジュゲート技術（ＢＩＯＣＯＮＪＵＧＡＴＥ
ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ）、アカデミック出版、サンディエゴ、１９９６；およびＦｅｅｎ
ｅｙ ｅｔ ａｌ．，タンパク質の修飾：化学シリーズの進歩（ＭＯＤＩＦＩＣＡＴＩＯ
Ｎ ＯＦ ＰＲＯＴＥＩＮＳ：Ａｄｖａｎｃｅｓ ｉｎ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｓｅｒｉ
ｅｓ）、第１９８巻、アメリカ化学学会、ワシントン、Ｄ．Ｃ．、１９８２で検討されて
いる。

糖核または修飾基から下がる（ｐｅｎｄａｎｔ）有用な反応性官能基には、限定するわ
けではないが以下を含む：
（ａ）カルボキシル基およびそれらの種々の誘導体、限定するわけではないが、Ｎ−ヒド
ロキシスクシンイミドエステル、Ｎ−ヒドロキシベンゾトリアゾールエステル、酸ハライ
ド、アシルイミダゾール、チオエステル、ｐ−ニトロフェニルエステル、アルキル、アル
ケニル、アルキニルおよび芳香族エステルを含む；
（ｂ）例えばエステル、エーテル、アルデヒド等に転換できるヒドロキシル基；
（ｃ）ハロアルキル基、ここでハライドは例えばアミン、カルボキシレートアニオン、チ
オールアニオン、カルバニオン、またはアルコキシドイオンのような求核性基に後で置き
換わることができ、これによりハロゲン原子の官能基で新たな基の共有結合をもたらす；
（ｄ）ディールス−アルダー反応に参加することができるジエノフィル基、例えばマレイ
ミド基；
（ｅ）後の誘導化が例えばイミン、ヒドラゾン、セミカルバゾンまたはオキシムのような
カルボニル誘導体の形成を介して、あるいはグリニャール付加またはアルキルリチウム付
加のようなメカニズムを介して可能となるようなアルデヒドまたはケトン基；
（ｆ）例えばスルホンアミドを形成するために、アミンとの後の反応のためのスルホニル
ハライド基；
（ｇ）例えばジスルフィドに転換されるか、またはアルキルおよびアシルハライドと反応
することができるチオール基；
（ｈ）例えばアシル化、アルキル化または酸化され得るアミンまたはスルフヒドリル基；
（ｉ）例えば付加環化、アシル化、マイケル付加等を受けることができるアルケン；およ
び
（ｊ）例えばアミンおよびヒドロキシル化合物と反応することができるエポキシド。

反応性官能基は、それらが反応性糖の核（ｒｅａｃｔｉｖｅ ｓｕｇｅｒ ｎｕｃｌｅ
ｕｓ）または修飾基の集成に必要な反応に参加せず、または妨害しないように選択するこ
とができる。あるいは反応性官能基は保護基の存在により反応へ参加することから保護す
ることができる。当業者は選択した組の反応条件を妨害しないように、どのように特定の
官能基を保護するかを理解している。例えば有用な保護基は、Ｇｒｅｅｎｅ ｅｔ ａｌ
．、有機合成における保護基（ＰＲＯＴＥＣＴＩＶＥ ＧＲＯＵＰＳ ＩＮ ＯＲＧＡＮ
ＩＣ ＳＹＮＴＨＥＳＩＳ）、ジョン ウィリー＆サンズ（Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆
Ｓｏｎｓ）、ニューヨーク、１９９１を参照にされたい。

以下に続く検討では、本発明の実施に有用な多数の修飾された糖の具体例を説明する。
例示態様ではシアル酸誘導体を糖の核として利用して、これに修飾基を結合する。シアル
酸誘導体についての検討に焦点をあてるのは、具体的説明の明瞭性のみのためであり、本
発明の範囲を限定すると解釈されるべきではない。当業者は例としてシアル酸を使用して
説明した様式に準じて、種々の他の糖部分を活性化し、そして誘導化することができると
考えるだろう。例えばガラクトース、グルコース、Ｎ−アセチルガラクトサミンおよびフ
コースを修飾して、当該技術分野で認識されている方法により容易に修飾される幾つかの
糖基質を挙げるために多数の方法を利用することができる。例えばＥｌｈａｌａｂｉ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．６：９３（１９９９）：およびＳｃｈａｆｅ
ｒ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．６５：２４（２０００）を参照にされたい。

例示態様では、本発明の方法により修飾するペプチドは哺乳動物細胞（例えばＣＨＯ細
胞）またはトランスジェニック動物で生産されるペプチドであり、すなわちＮ−および／
またはＯ−結合オリゴ糖鎖を含み、これらは不完全にシアル化されている。シアル酸を欠
き、そして末端ガラクトース残基を含む糖ペプチドのオリゴ糖鎖は、ＰＥＧ化、ＰＰＧ化
またはそうではなく修飾されたシアル酸を用いて修飾することができる。

スキーム４では、マンノサミングリコシド１を保護されたアミノ酸（例えばグリシン）
誘導体の活性化エステルを用いて処理し、糖のアミン残基を対応する保護されたアミノ酸
アミド付加物に転換する。付加物をアルドラーゼを用いて処理してシアル酸２を形成する
。化合物２をＣＭＰ−ＳＡシンテターゼの作用により対応するＣＭＰ誘導体へ転換し、続
いてＣＭＰ誘導体の触媒的水素付加により化合物３を生成する。グリシン付加物の形成を
介して導入されたアミンは、化合物３を活性化ＰＥＧまたはＰＰＧ誘導体と反応させるこ
とによりＰＥＧまたはＰＰＧ結合の位置として利用して（例えばＰＥＧ−Ｃ（Ｏ）ＮＨＳ
、ＰＰＧ−Ｃ（Ｏ）ＮＨＳ）、それぞれ４または５を生成する。

表２はＰＥＧまたはＰＰＧ部分により誘導化される糖モノホスフェートの代表例を説明
する。表２の相当の化合物がスキーム１の方法により調製される。他の誘導体は技術的に
認識されている方法により調製される。例えばＫｅｐｐｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｇｌｙｃ
ｏｂｉｏｌｏｇｙ １１：１１Ｒ（２００１）；およびＣｈａｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，
Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ １０：１０４９（２０００）を参照にされたい。他のアミン
反応性ＰＥＧおよびＰＰＧ類似体は市販されているか、または当業者が容易に入手できる
方法により調製することができる。

本発明の実施に使用する修飾された糖ホスフェートは、上記に説明したものと同じく他
の位置でも置換され得る。現在好適なシアル酸の置換を式５に説明する。

式中、Ｘは好ましくは−Ｏ−、−Ｎ（Ｈ）−、−Ｓ、ＣＨ_２−およびＮ（Ｒ）_２から選
択される連結基であり、ここで各ＲはＲ^１〜Ｒ^５から独立して選択される員である。記号
Ｙ、Ｚ、ＡおよびＢは、各々がＸの同一性について上に説明した基から選択される基を表
す。Ｘ、Ｙ、Ｚ、ＡおよびＢはそれぞれ独立して選択され、したがってそれらは同じかま
たは異なることができる。記号Ｒ^１、Ｒ^２、Ｒ^３、Ｒ^４およびＲ^５はＨ、ポリマー、水溶
性ポリマー、治療部分、生体分子または他の部分を表す。記号Ｒ６はＨ、ＯＨまたはポリ
マーを表す。あるいはこれらの記号はポリマー、水溶性ポリマー、治療部分、生体分子ま
たは他の部分に結合したリンカーを表す。

別の例示態様では、スキーム５に説明するように無水クロロ酢酸の使用による求核置換
のためにマンノサミンが同時にアシル化そして活性化される。

生成したクロロ−誘導化グリカンをピルベートとアルドラーゼの存在下で接触させ、ク
ロロ−誘導化シアル酸を形成する。対応するヌクレオチド糖はシアル酸誘導体を適当なヌ
クレオチドトリホスフェートおよびシンテターゼと接触させることにより調製する。シア
ル酸部分のクロロ基をチオ−ＰＥＧのような求核性ＰＥＧ誘導体に置き換える。

さらなる例示態様では、スキーム６に示すように、マンノサミンをビス−ＨＯＰＴジカ
ルボキシレートを用いてアシル化し、対応するアミド−アルキル−カルボン酸を生成し、
これを続いてシアル酸誘導体に転換する。このシアル酸誘導体をヌクレオチド糖に転換し
、そしてカルボン酸を活性化し、そしてアミノ−ＰＥＧのような求核性ＰＥＧ誘導体と反
応させる。

スキーム７に説明する別の例示態様では、アミン−およびカルボキシル−保護ノイラミ
ン酸を、１級ヒドロキシル基を対応するｐ−トルエンスルホン酸エステルに転換すること
により活性化し、そしてメチルエステルを開裂する。活性化されたノイラミン酸は対応す
るヌクレオチド糖に転換され、そして活性基はチオ−ＰＥＧのような求核性ＰＥＧ種に置
き換える。

スキーム８に説明するようなさらなる例示態様では、アミン−およびカルボキシル−保
護ノイラミン酸誘導体の１級ヒドロキシル部分を、クロロ−ＰＥＧのような求電子性ＰＥ
Ｇを使用してアルキル化する。続いてメチルエステルを開裂し、そしてＰＥＧ−糖をヌク
レオチド糖に転換する。

シアル酸以外のグリカンは、本明細書に説明する方法を使用してＰＥＧで誘導化するこ
とができる。誘導化されたグリカンそれ自体が本発明の範囲内である。すなわちスキーム
９はＰＥＧ化ガラクトースヌクレオチド糖への例示合成経路を提供する。ガラクトースの
１級ヒドロキシル基は対応するトルエンスルホン酸エステルのように活性化され、これは
続いてヌクレオチド糖に転換される。

スキーム１０は、ガラクトース−６−アミン部分に基づくガラクトース−ＰＥＧ誘導体
を調製する例示経路を説明する。すなわちガラクトサミンをヌクレオチド糖に転換し、そ
してガラクトサミンのアミン部分を活性なＰＥＧ誘導体で官能化する。

スキーム１１はガラクトース誘導体の別の例示経路を提供する。スキーム１１の出発点
はガラクトース−２−アミンであり、これをヌクレオチド糖に転換する。ヌクレオチド糖
のアミン部分は、メトキシ−ＰＥＧ（ｍＰＥＧ）カルボン酸のようなＰＥＧ誘導体を結合
するための位置である。

本明細書で開示する結合物に結合する部分の例には、限定する訳ではないがＰＥＧ誘導
体（例えばアシル−ＰＥＧ、アシル−アルキル−ＰＥＧ、アルキル−アシル−ＰＥＧカル
バモイル−ＰＥＧ、アリール−ＰＥＧ、アルキル−ＰＥＧ）、ＰＰＧ誘導体（例えばアシ
ル−ＰＰＧ、アシル−アルキル−ＰＰＧ、アルキル−アシル−ＰＰＧカルバモイル−ＰＰ
Ｇ、アリール−ＰＰＧ）、ポリアスパラギン酸、ポリグルタメート、ポリリシン、治療部
分、診断部分、マンノース−６−ホスフェート、ヘパリン、ヘパラン、ＳＬｅ^ｘ、マンノ
ース、マンノース−６−ホスフェート、シアリルルイスＸ、ＦＧＦ、ＶＦＧＦ、タンパク
質（例えばトランスフェリン）、コンドロイチン、ケラタン、デルマタン、デキストラン
、修飾されたデキストラン、アミロース、ビスホスフェート、ポリ−ＳＡ、ヒアルロン酸
、ケリタン、アルブミン、インテグリン、アンテナ状オリゴ糖、ペプチド等を含む。種々
の修飾基をサッカリド部分に結合する方法は、当業者が容易に入手できるものである（ポ
リ（エチレングリコールの化学：生物工学的および生物医学的応用（ＰＯＬＹ（ＥＴＨＹ
ＬＥＮＥ ＧＬＹＣＯＬ ＣＨＥＭＩＳＴＲＹ：ＢＩＯＴＥＣＨＮＩＣＡＬ ＡＮＤ Ｂ
ＩＯＭＥＤＩＣＡＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ）、Ｊ．Ｍｉｌｔｏｎ Ｈａｒｒｉｓ編
集、プレナム出版社、１９９２；ポリ（エチレングリコール）の化学および生物学的応用
（ＰＯＬＹ（ＥＴＨＹＬＥＮＥ ＧＬＹＣＯＬ）ＣＨＥＭＩＣＡＬ ＡＮＤ ＢＩＯＬＯ
ＧＩＣＡＬ ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ）、Ｊ．Ｍｉｌｔｏｎ Ｈａｒｒｉｓ編集、ＡＣ
Ｓシンポジウムシリーズ、Ｎｏ．６８０、アメリカ化学学会、１９９７；Ｈｅｒｍａｎｓ
ｏｎ、バイオコンジュゲート技術（ＢＩＯＣＯＮＪＵＧＡＴＥ ＴＥＣＨＮＩＱＥＳ）、
アカデミック出版、サンディエゴ、１９９６；およびＤｕｎｎ ｅｔ ａｌ．編集、ポリ
マー性薬剤および薬剤送達系（ＰＯＬＹＭＥＲＩＣ ＤＲＵＧＳ ＡＮＤ ＤＲＵＧ Ｄ
ＥＬＩＶＥＲＹ ＳＹＳＴＥＭＳ）、ＡＣＳシンポジウムシリーズ、Ｎｏ．４６９、アメ
リカ化学学会、ワシントン、Ｄ．Ｃ．１９９１）。
糖、ヌクレオチド糖および誘導体の精製
上記の方法により生成されたヌクレオチド糖および誘導体は、精製せずに使用すること
ができる。しかし通常、生成物を回収することが好ましい。薄または厚層（ｔｈｉｃｋ
ｌａｙｅｒ）クロマトグラフィー、カラムクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラ
フィー、または膜濾過のような標準的な周知技法を使用することができる。膜濾過を使用
すること、より好ましくは逆浸透膜を使用することが好ましく、または回収のためにはこ
れから、そして本明細書に引用する技術文献で検討するように１以上のカラムクロマトグ
ラフィー技術を使用することが好適である。例えば膜濾過（ここで膜は約３０００〜約１
０，０００の分子量カットオフを有する）を使用して、１０，０００Ｄａ未満の分子量を
有する試薬についてタンパク質を取り出すために使用することができる。次に膜濾過また
は逆浸透を使用して塩を除去し、かつ／または生成物サッカリドを精製するために使用す
ることができる（例えば国際公開第９８／１５５８１号パンフレットを参照にされたい）
。ナノフィルター（ｎａｎｏｆｉｌｔｅｒ）膜は１種の逆浸透膜であり、これは使用する
膜に依存して１価の塩を通すが、多価の塩および約１００から約２，０００ダルトンより
大きい非電荷溶質は保持する。このように典型的な応用では、本発明の方法により調製さ
れるサッカリドは膜内に保持され、そして混入する塩は通過する。
Ｇ．架橋性基
本発明の方法で使用するための修飾された糖の調製には、修飾基の糖残基への結合、そ
してグリコシルトランスフェラーゼの基質となる安定な付加物の形成を含む。このように
修飾基を糖へ結合するために架橋剤を使用することが好ましいことが多い。修飾基を炭水
化物部分に結合するために使用することができる二官能性化合物の例には、限定するわけ
ではないが二官能性ポリ（エチレングリコール）、ポリアミド、ポリエーテル、ポリエス
テル等を含む。炭水化物を他の分子に連結するための一般的取り組みは、技術文献にて知
られている。例えば、Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８：１８５
６（１９８９）；Ｂｈａｔｉａ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１７８：４
０８（１９８９）；Ｊａｎｄａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１２：
８８８６（１９９０）およびＢｅｄｎａｒｓｋｉ ｅｔ ａｌ．、国際公開第９２／１８
１３５号パンフレットを参照にされたい。以下の考察は反応基が新生の修飾された糖の糖
部分上で良性（ｂｅｎｉｇｎ）として処置される。この考察に焦点をあてるのは具体的説
明の明瞭性のためである。当業者はこの考察が修飾基上の反応基にも関連すると考えるだ
ろう。

例示の方法には、ヘテロ二官能性クロスリンカーＳＰＤＰ（ｎ−スクシンイミジル−３
−（２−ピリジルジチオ）プロピオネート）を使用して、保護されたスルフヒドリルの糖
への包含、そして次に修飾基上の別のスルフヒドリルとジスルフィド結合を形成するため
にスルフヒドリルの脱保護が関与する。

ＳＰＤＰがグリコシルトランスフェラーゼの基質として作用する修飾された糖の能力に
悪影響を及ぼす場合、２−イミノチオランまたはＮ−スクシンイミジルＳ−アセチルチオ
アセテート（ＳＡＴＡ）のような多数のクロスリンカーの１つを使用して、ジスルフィド
結合を形成する。２−イミノチオランは１級アミンと反応し、即座に非保護スルフヒドリ
ルをアミノ−含有分子に包含する。ＳＡＴＡも１級アミンと反応するが保護されたスルフ
ヒドリルを包含し、これは後にヒドロキシルアミンを使用して脱アセチル化されて遊離の
スルフヒドリルを生成する。各々の場合で、包含されたスルフヒドリルは他のスルフヒド
リルまたは保護されたスルフヒドリルとＳＰＤＰのように自由に反応し、必要なジスルフ
ィド結合を形成する。

上記の方法は例であり、そして本発明で使用するリンカーを限定するものではない。修
飾基をペプチドに架橋するための様々な方法に使用できる他のクロスリンカーを入手する
ことができる。例えばＴＰＣＨ（Ｓ−（２−チオピリジル）−Ｌ−システインヒドラジド
およびＴＰＭＰＨ（Ｓ−（２−チオピリジル）メルカプト−プロピオノヒドラジド）は、
穏和な過ヨウ素酸塩処理により前以て酸化された炭水化物部分と反応し、このようにクロ
スリンカーのヒドラジド部分と過ヨウ素酸塩が生成したアルデヒドとの間にヒドラゾン結
合を形成する。ＴＰＣＨおよびＴＰＭＰＨは２−ピリジルチオン保護スルフヒドリル基を
糖に導入し、これはＤＴＴで脱保護することができ、そして次いで成分間にジスルフィド
結合を形成するように結合物に使用される。

ジスルフィド結合が安定な修飾された糖を生成するには適さないことが分かった場合、
成分間により安定な結合を包含する他のクロスリンカーを使用することができる。ヘテロ
二官能性クロスリンカーＧＭＢＳ（Ｎ−ガンマ−マレイミドブチリルオキシ）スクシンイ
ミド）およびＳＭＣＣ（スクシンイミジル４−（Ｎ−マレイミド−メチル）シクロヘキサ
ン）は１級アミンと反応し、これがマレイミド基を成分上に導入する。続いてマレイミド
基は前に挙げたクロスリンカーにより導入することができる他の成分上のスルフヒドリル
と反応し、このようにして成分間に安定なチオエーテル結合を形成する。成分間の立体障
害がいずれかの成分の活性または修飾された糖がグリコシルトランスフェラーゼの基質と
して作用する能力を妨害する場合、成分間に長いスペーサーアームを導入し、そして前に
挙げた幾つかのクロスリンカー（例えばＳＰＤＰ）の誘導体を含むクロスリンカーを使用
することができる。このように有用な適当なクロスリンカーが豊富に存在し：その各々が
最適なペプチド結合物および修飾された糖の生成に及ぼす効果に依存して選択される。

さまざまな試薬が、分子内の化学的架橋で修飾糖の成分を修飾するために使用される（
架橋試薬および架橋結合手順の総説に関しては：Ｗｏｌｄ，Ｆ．Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏ
ｌ．２５：６２３−６５１，１９７２；Ｗｅｅｔａｌｌ，Ｈ．Ｈ．，ａｎｄ Ｃｏｏｎｅ
ｙ，Ｄ．Ａ．：薬剤としての酵素（ＥＮＺＹＭＥ ＡＳ ＤＲＵＧＳ）で、（Ｈｏｌｃｅ
ｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ｒｏｂｅｒｔｓ編集）、第３９５〜４４２頁、ウィリー、ニューヨ
ーク、１９８１；Ｊｉ，Ｔ．Ｈ，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．９１：５８０−６０９，１
９８３：Ｍａｔｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐ．１７：１６７−１
８３，１９９３を参照にされたい（これらすべては引用により本明細書に編入する））。
好適な架橋剤は種々のゼロ−長（ｚｅｒｏ−ｌｅｎｇｔｈ）、ホモ−二官能性およびヘテ
ロ−二官能性架橋試薬に由来する。ゼロ−長架橋試薬には、外因性の物質の導入が無い、
２つの必須の化学基の直接的結合を含む。ジスルフィド結合の形成を触媒する試薬は、こ
の範疇に属する。別の例はカルボキシルと１級アミノ基の縮合を導入してアミド結合を形
成する、カルボジイミド、エチルクロロホルメート、ウッドワード（Ｗｏｏｄｗａｒｄ'
ｓ）試薬Ｋ−（２−エチル−５−フェニルイソオキサゾリウム−３'−スルホネート）お
よびカルボニルイミダゾールのような試薬である。これらの化学試薬に加えて、酵素トラ
スングルタミナーゼ（グルタミル−ペプチドγ−グルタミルトランスフェラーゼ；ＥＣ２
．３．２．１３）をゼロ−長の架橋試薬として使用することができる。この酵素は通常、
基質として１級アミノ基を用いて、タンパク質−結合グルタミン残基のカルボキサミド基
でアシル転移反応を触媒する。好適なホモ−およびヘテロ−二官能性試薬はそれぞれ２つ
の同一または２つの似ていない部位を含み、これらはアミノ、スルフヒドリル、グアニジ
ノ、インドールまたは非特異的基と反応性となり得る。
２．架橋試薬中の好適な特異的部位
ａ．アミノ−反応基
１つの好適な態様では、クロス−リンカー上のこの部位はアミノ−反応基である。アミ
ノ−反応基の有用な非限定的例には、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）エステル
、イミドエステル、イソシアネート、アシルハライド、アリールアジド、ｐ−ニトロフェ
ニルエステル、アルデヒドおよびスルホニルクロライドを含む。

ＮＨＳエステルは修飾された糖成分の１級（芳香族を含む）アミノ基と優先的に反応す
る。ヒスチジンのイミダゾール基は１級アミンと反応を競合するが、反応生成物は不安定
であり、そして容易に加水分解される。この反応にはＮＨＳエステルの酸カルボキシル上
でアミンの求核的攻撃が関与し、アミドを形成してＮ−ヒドロキシスクシンイミドを放出
する。このようにして元のアミノ基の正電荷が失われる。

イミドエステルは修飾された糖成分のアミン基との反応のための最も特異的なアシル化
試薬である。７から１０の間のｐＨで、イミドエステルは１級アミンとのみ反応する。１
級アミンは求核的にイミデートを攻撃し、高ｐＨでアミジンに、または低ｐＨで新しいイ
ミデートに分解する中間体を生成する。この新たな中間体は別の１級アミンと反応させる
ことができ、これにより単官能性イミデートが二官能的に反応すると仮定する場合、２つ
のアミノ基を架橋する。１級アミノとの反応の主な生成物は、元のアミンよりも強力な塩
基であるアミジンである。したがって元のアミノ基の正電荷が保持される。

イソシアネート（およびイソチオシアネート）は修飾された糖成分の１級アミンと反応
して、安定な結合を形成する。スルフヒドリル、イミダゾールおよびチロシル基とそれら
の反応は、比較的不安定な生成物を生じる。

アシルアジドもアミノ−特異的試薬として使用され、ここで親和性成分の求核性アミン
がわずかにアルカリ性の条件下、例えばｐＨ８．５で酸性カルボキシル基を攻撃する。

１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼンのようなアリールハライドは、修飾さ
れた糖成分のアミノ基およびチロシンのフェノール性基と優先的に反応するが、スルフヒ
ドリルおよびイミダゾール基とも反応する。

モノ−およびジカルボン酸のｐ−ニトロフェニルエステルも有用なアミノ−反応基であ
る。試薬の特異性はそれほど高くないが、α−およびε−アミノ基は最も急速に反応する
ようである。

グルタルアルデヒドのようなアルデヒドは、修飾された糖の１級アミンと反応する。不
安定なシッフ塩基がアミノ基とアルデヒドのアルデヒドとの反応で形成されるが、グルタ
ルアルデヒドは安定な架橋により修飾糖を修飾することができる。ｐＨ６〜８で（このｐ
Ｈは典型的な架橋条件である）、環式ポリマーは脱水を受けてα−β不飽和アルデヒドポ
リマーを形成する。しかしシッフ塩基は別の二重結合と結合した時に安定である。両二重
結合の共鳴的相互作用は、シッフ結合の加水分解を防止する。さらに高い局所的濃度でア
ミンはエチレン二重結合を攻撃して安定なマイケル付加生成物を形成することができる。

芳香族スルホニルクロライドは、修飾された糖成分の種々の部位と反応するが、安定な
スルホンアミド結合を生じるアミノ基との反応が最も重要である。
ｂ．スルフヒドリル−反応基
別の好適な態様では、部位はスルフヒドリル−反応性基である。スルフヒドリル−反応
基の有用な非限定的例には、マレイミド、アルキルハライド、ピリジルジスルフィドおよ
びチオフタルイミドを含む。

マレイミドは修飾された糖成分のスルフヒドリル基と優先的に反応して安定なチオエー
テル結合を形成する。それらはまた、より一層遅い反応速度でヒスチジンの１級アミノ基
およびイミダゾール基とも反応する。しかしｐＨ７では、このｐＨで単純なチオールの反
応速度は対応するアミンの反応速度よりも１０００倍大きいので、マレイミド基はスルフ
ヒドリルに特異的な基と考えられる。

アルキルハライドはスルフヒドリル基、スルフィド、イミダゾールおよびアミノ基と反
応する。しかし中性からわずかにアルカリ性のｐＨで、アルキルハライドは主にスルフヒ
ドリル基と反応して安定なチオエーテル結合を形成する。より高ｐＨではアミノ基との反
応が有利である。

ピリジルジスルフィドはジスルフィド交換を介して遊離のスルフヒドリルと反応して、
混合ジスルフィドを与える。結果としてピリジルジスルフィドは最も特異的なスルフヒド
リル−反応基である。

チオフタルイミドは遊離のスルフヒドリル基と反応してジスルフィドを形成する。
ｃ．カルボキシル−反応性残基
別の態様では、水および有機溶媒に可溶性のカルボジイミドをカルボキシル−反応試薬
として使用する。これらの化合物は遊離のカルボキシル基と反応してプソイドウレアを形
成し、次にこれは利用可能なアミンにカップリングしてアミド結合を形成することができ
る。カルボジイミドを用いてカルボキシル基を修飾する手順は、当該技術分野では周知で
ある（Ｙａｍａｄａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２０：４８３６−４８
４２，１９８１を参照にされたい）。
３．架橋試薬中の好適な非特異的部位
部位−特異的な反応性部分に加えて、本発明は糖を修飾基に連結するための非特異的な
反応性基も企図する。

非特異的なクロス−リンカーの例には、暗中では完全に不活性な光活性化可能な（ｐｈ
ｏｔｏａｃｔｉｖａｔａｂｌｅ）基を含み、これは適切なエネルギーの光子を吸収すると
反応性種に変換される。好適な態様では、光活性化可能な基は、アジドの加熱または光分
解で生成するニトレンの前駆体から選択される。電子−欠損ニトレンは極めて反応性であ
り、そしてＮ−Ｈ、Ｏ−Ｈ、Ｃ−ＨおよびＣ＝Ｃを含む種々の化学結合と反応することが
できる。３種類のアジド（アリール、アルキルおよびアシル誘導体）を使用することがで
きるが、アリールアジドが現在好適である。光分解でのアリールアジドの反応性は、Ｃ−
Ｈ結合よりもＮ−ＨおよびＯＨでより良い。電子−欠損アリールニトレンは急速に環が拡
大してデヒドロアゼピンを形成し、これはＣ−Ｈ挿入生成物を形成するよりは求核性物質
と反応する傾向がある。アリールアジドの反応性は環中のニトロまたはヒドロキシル基の
ような電子−吸引置換基の存在により上げることができる。そのような置換はより長い波
長にアリールアジドの最大吸収を支援する（ｐｕｓｈ）。非置換アリールアジドは２６０
〜２８０ｎｍに範囲の最大吸収を有し、一方、ヒドロキシおよびニトロアリールアジドは
３０５ｎｍを越えて有意な光を吸収する。したがってヒドロキシおよびニトロアリールア
ジドは、非置換アリールアジドよりも親和性成分に関してより害が少ない光分解条件を使
用するので最も好ましい。

別の好適な態様では、光活性化可能な基はフッ素添加されたアリールアジドから選択さ
れる。フッ素添加されたアリールアジドの光分解産物はアリールニトレンであり、そのす
べてが高い効率でのＣ−Ｈ結合の挿入を含むこの基に特徴的な反応を受ける（Ｋｅａｎａ
ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．５５：３６４０−３６４７，１９９０）。

別の態様では、光活性化可能な基はベンゾフェノン残基から選択される。ベンゾフェノ
ン試薬は一般にアリールアジド試薬よりも高い架橋結合収量を与える。

別の態様では、光活性化可能な基はジアゾ化合物から選択され、これが光分解で電子−
欠損カルベンを形成する。これらのカルベンはＣ−Ｈ結合への挿入、二重結合への付加（
芳香族系を含む）、水素誘引および求核中心への配位を含む種々の反応を受け、炭素イオ
ンを与える。

さらに別の態様では、光活性化可能な基はジアゾピルベートから選択される。例えばｐ
−ニトロフェニルジアゾピルベートのｐ−ニトロフォニルエステルは脂肪族アミンと反応
してジアゾピルビン酸アミドを与え、これは紫外線の光分解を受けてアルデヒドを形成す
る。光分解したジアゾピルベートで修飾された親和性成分はホルムアルデヒドまたはグル
タルアルデヒドのように反応して架橋を形成する。
４．ホモ二官能性試薬
ａ．第一アミンと反応性のホモ二官能性クロスリンカー
アミン−反応性クロス−リンカーの合成、特性および応用は、技術文献で工業的使用の
ために記載されている（架橋の手順および試薬の総説については上記を参照にされたい）
。多くの試薬が利用可能である（例えば、ピアスケミカル（Ｐｉｅｒｃｅ Ｃｈｅｍｉｃ
ａｌ）社、ロックフォード、イリノイ州；シグマケミカル社、セントルイス、モンタナ州
；モレキュラープローブス社、ユージーン、オレゴン州）。

ホモ二官能性ＮＨＳエステルの好適な非限定的例には、ジスクシンイミジルグルタレー
ト（ＤＳＧ）、ジスクシンイミジルスベレート（ＤＳＳ）、ビス（スルホスクシンイミジ
ル）スベレート（ＢＳ）、ジスクシンイミジルタルトレート（ＤＳＴ）、ジスルホスクシ
ンイミジルタルトレート（スルホ−ＤＳＴ）、ビス−２−（スクシンイミドオキシカルボ
ニルオキシ）エチルスルホン（ＢＳＯＣＯＥＳ）、ビス−２−（スルホスクシンイミドオ
キシカルボニルオキシ）エチルスルホン（スルホ−ＢＳＯＣＯＥＳ）、エチレングリコー
ルビス（スクシンイミジルスクシネート）（ＥＧＳ）、エチレングリコールビス（スルホ
スクシンイミジルスクシネート）（スルホ−ＥＧＳ）、ジチオビス（スクシンイミジルプ
ロピオネート）（ＤＳＰ）およびジチオビス（スルホスクシンイミジルプロピオネート）
（スルホ−ＤＳＰ）を含む。ホモ二官能性イミドエステルの好適な非−限定的例には、ジ
メチルマロンイミデート（ＤＭＭ）、ジメチルスクシンイミデート（ＤＭＳＣ）、ジメチ
ルアジピミデート（ＤＭＡ）、ジメチルピメリミデート（ＤＭＰ）、ジメチルスベリミデ
ート（ＤＭＳ）、ジメチル−３，３'−オキシジプロピオンイミデート（ＤＯＤＰ）、ジ
メチル−３，３'−（メチレンジオキシ）ジプロピオンイミデート（ＤＭＤＰ）、ジメチ
ル−３'−（ジメチレンジオキシ）ジプロピオンイミデート（ＤＤＤＰ）、ジメチル−３
，３'−（テトラメチレンジオキシ）−ジプロピオンイミデート（ＤＴＤＰ）およびジメ
チル−３，３'−ジチオビスプロピオンイミデート（ＤＴＢＰ）を含む。

ホモ二官能性イソチオシアネートの好適な非限定的例には：ｐ−フェニレンジイソチオ
シアネート（ＤＩＴＣ）、および４，４'−ジイソチオシアノ−２，２'−ジスルホン酸
スチルベン（ＤＩＤＳ）を含む。

ホモ二官能性イソシアネートの好適な非限定的例には、キシレン−ジイソシアネート、
トルエン−２，４−ジイソシアネート、トルエン−２−イソシアネート−４−イソチオシ
アネート、３−メトキシジフェニルメタン−４，４'−ジイソシアネート、２，２'−ジ
カルボキシ−４，４'−アゾフェニルジイソシアネートおよびヘキサメチレンジイソシア
ネートを含む。

ホモ二官能性アリールハライドの好適な非限定的例には、１，５−ジフルオロ−２，４
−ジニトロベンゼン（ＤＦＤＮＢ）、および４，４'−ジフルオロ−３，３'−ジニトロ
フェニル−スルホンを含む。

ホモ二官能性脂肪族アルデヒド試薬の好適な非限定的例には、グリオキサール、マロン
ジアルデヒドおよびグルタルアルデヒドを含む。

ホモ二官能性アシル化試薬の好適な非限定的例には、ジカルボン酸のニトロフェニルエ
ステルを含む。

ホモ二官能性芳香族スルホニルクロライドの好適な非限定的例には、フェノール−２，
４−ジスルホニルクロライドおよびα−ナフトール−２，４−ジスルホニルクロライドを
含む。

さらなるアミノ−反応性ホモ二官能性試薬の好適な非限定的例には、アミンと反応して
ビスカルバメートを与えるエリトリトールビスカルボネートを含む。
ｂ．遊離スルフヒドリル基と反応性のホモ二官能性クロスリンカー
そのような試薬の合成、特性および応用は、技術文献に記載されている（架橋の手順お
よび試薬の総説については上記を参照にされたい）。多くの試薬が市販されている（例え
ば、ピアスケミカル社、ロックフォード、イリノイ州；シグマケミカル社、セントルイス
、モンタナ州；モレキュラープローブス社、ユージーン、オレゴン州）。

ホモ二官能性マレイミドの好適な非限定的例には、ビスマレイミドヘキサン（ＢＭＨ）
、Ｎ，Ｎ'−（１，３−フェニレン）ビスマレイミド、Ｎ，Ｎ'−（１，２−フェニレン
）ビスマレイミド、アゾフェニルジマレイミドおよびビス（Ｎ−マレイミドメチル）エー
テルを含む。

ホモ二官能性ピリジルジスルフィドの好適な非限定的例には、１，４−ジ−３'−（２
'−ピリジルジチオ）プロピオンアミドブタン（ＤＰＤＰＢ）を含む。

ホモ二官能性アルキルハライドの好適な非限定的例には、２，２'−ジカルボキシ−４
，４'−ジヨードアセトアミドアゾベンゼン、α，α'−ジヨード−ｐ−キシレンスルホ
ン酸、α，α'−ジブロモ−ｐ−キシレンスルホン酸、Ｎ，Ｎ'−ビス（ｂ−ブロモメチ
ル）ベンジルアミン、Ｎ，Ｎ'−ジ（ブロモアセチル）フェニルヒドラジンおよび１，２
−ジ（ブロモアセチル）アミノ−３−フェニルプロパンを含む。
ｃ．ホモ二官能性の光活性化可能なクロスリンカー
そのような試薬の合成、特性および応用は、技術文献に記載されている（架橋の手順お
よび試薬の総説については上記を参照にされたい）。数種の試薬が市販されている（例え
ば、ピアスケミカル社、ロックフォード、イリノイ州；シグマケミカル社、セントルイス
、モンタナ州；モレキュラープローブス社、ユージーン、オレゴン州）。

ホモ二官能性の光活性化可能なクロスリンカーの好適な非限定的例には、ビス−β−（
４−アジドサリチルアミド）エチルジスルフィド（ＢＡＳＥＤ）、ジ−Ｎ−（２−ニトロ
−４−アジドフェニル）−シスタミン−Ｓ，Ｓ−ジオキシド（ＤＮＣＯ）および４，４'
−ジチオビスフェニルアジドを含む。
５．ヘテロ二官能性試薬
ａ．ピリジルジスルフィド部分を持つアミノ−反応性ヘテロ二官能性試薬
そのような試薬の合成、特性および応用は、技術文献に記載されている（架橋結合の手
順および試薬の総説については上記を参照にされたい）。多くの試薬が市販されている（
例えば、ピアスケミカル社、ロックフォード、イリノイ州；シグマケミカル社、セントル
イス、モンタナ州；モレキュラープローブス社、ユージーン、オレゴン州）。

ピリジルジスルフィド部分およびアミノ−反応性ＮＨＳエステルを持つヘテロ二官能性
試薬の好適な非限定的例には、Ｎ−スクシンイミジル−３−（２−ピリジルジチオ）プロ
ピオネート（ＳＰＤＰ）、スクシンイミジル６−３−（２−ピリジルジチオ）プロピオン
アミドヘキサノエート（ＬＣ−ＳＰＤＰ）、スルホスクシンイミジル６−３−（２−ピリ
ジルジチオ）プロピオンアミドヘキサノエート（スルホ−ＬＣＳＰＤＰ）、４−スクシン
イミジルオキシカルボニル−α−メチル−α−（２−ピリジルジチオ）トルエン（ＳＭＰ
Ｔ）およびスルホスクシンイミジル６−α−メチル−α−（２−ピリジルジチオ）トルア
ミドヘキサノエート（スルホ−ＬＣ−ＳＭＰＴ）を含む。
ｂ．マレイミド部分を持つアミノ−反応性ヘテロ二官能性試薬
そのような試薬の合成、特性および応用は、技術文献に記載されている。マレイミド部
分およびアミノ−反応性ＮＨＳエステルを持つヘテロ二官能性試薬の好適な非限定的例に
は、スクシンイミジルマレイミジルアセテート（ＡＭＡＳ）、スクシンイミジル３−マレ
イミジルプロピオネート（ＢＭＰＳ）、Ｎ−γ−マレイミドブチリルオキシスクシンイミ
ドエステル（ＧＭＢＳ）Ｎ−γ−マレイミドブチリルオキシスルホスクシンイミドエステ
ル（スルホ−ＧＭＢＳ）スクシンイミジル６−マレイミジルヘキサノエート（ＥＭＣＳ）
、スクシンイミジル３−マレイミジルベンゾエート（ＳＭＢ）、ｍ−マレイミドベンゾイ
ル−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＭＢＳ）、ｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ
−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステル（スルホ−ＭＢＳ）、スクシンイミジル４−
（Ｎ−マレイミドメチル）−シクロヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＭＣＣ）、スル
ホスクシンイミジル ４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボキシレ
ート（スルホ−ＳＭＣＣ）、スクシンイミジル ４−（ｐ−マレイミドフェニル）ブチレ
ート（ＳＭＰＢ）およびスルホスクシンイミジル ４−（ｐ−マレイミドフェニル）ブチ
レート（スルホ−ＳＭＰＢ）を含む。
ｃ．アルキルハライド部分を持つアミノ−反応性ヘテロ二官能性試薬
そのような試薬の合成、特性および応用は、技術文献に記載されている。アルキルハラ
イド部分およびアミノ−反応性ＮＨＳエステルを持つヘテロ二官能性試薬の好適な非限定
的例には、Ｎ−スクシンイミジル−（４−ヨードアセチル）アミノベンゾエート（ＳＩＡ
Ｂ）、スルホスクシンイミジル−（４−ヨードアセチル）アミノベンゾエート（スルホ−
ＳＩＡＢ）、スクシンイミジル−６−（ヨードアセチル）アミノヘキサノエート（ＳＩＡ
Ｘ）、スクシンイミジル−６−（６−（（ヨードアセチル）−アミノ）ヘキサノイルアミ
ノ）ヘキサノエート（ＳＩＡＸＸ）、スクシンイミジル−６−（（（４−ヨードアセチル
）−アミノ）−メチル）−シクロヘキサン−１−カルボニル）アミノヘキサノエート（Ｓ
ＩＡＣＸ）およびスクシンイミジル−４（（ヨードアセチル）−アミノ）−メチルシクロ
ヘキサン−１−カルボキシレート（ＳＩＡＣ）を含む。

アミノ−反応性ＮＨＳエステルおよびアルキルジハライド部分を持つヘテロ二官能性
試薬の好適な例には、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル ２，３−ジブロモプロピオネー
ト（ＳＤＢＰ）を含む。ＳＤＢＰは、クロスリンカーをアミノ基に結合することにより親
和性成分に分子内クロスリンカーを導入する。１級アミン基に対するジブロモプロピオニ
ル部分の反応性は、反応温度により制御される（ＭｃＫｅｎｚｉｅ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒ
ｏｔｅｉｎ Ｃｈｅｍ．７：５８１−５９２（１９８８））。

アルキルハライド部分およびアミノ−反応性ｐ−ニトロフェニルエステル部分を持つヘ
テロ二官能性試薬の好適な非限定的例には、ｐ−ニトロフェニルヨードアセテート（ＮＰ
ＩＡ）を含む。

他の架橋結合剤も当業者に知られている。例えばＰｏｍａｔｏ ｅｔ ａｌ．、米国特
許第５，９６５，１０６号明細書を参照にされたい。特定の応用のための適切な架橋剤を
選択する能力は、当業者の能力の範囲内である。
ｄ．開裂性リンカー基
さらなる態様では、リンカー基には開裂して糖残基から修飾基を放出することができる
基が提供される。多くの開裂性基が当該技術分野では知られている。例えばJung et al.,
Biochem. Biophys. Acta 761: 152-162 (1983); Joshi et al., J. Biol. Chem. 265: 1
4518-14525 (1990); Zarling et al., J. Immunol. 124: 913-920 (1980); Bouizar et a
l., Eur. J. Biochem. 155: 141-147 (1986); Park et al., J. Biol. Chem. 261: 205-2
10 (1986); Browning et al., Immunol. 143: 1859-1867 (1989)を参照にされたい。さら
に広範な開裂性の二官能性（ホモ−およびヘテロ−二官能性の両方）リンカー基がピアス
のような供給元から市販されている。

例示する開裂性部分は、光、熱またはチオール、ヒドロキシルアミン、塩基、過ヨウ素
酸塩等のような試薬を使用して開裂することができる。さらに特定の好適な基はエンドサ
イトーシスされる反応でインビボで開裂される（例えばシス−アコニチル；Ｓｈｅｎ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１０２：１０４
８（１９９１）を参照にされたい）。好適な開裂性基は、ジスルフィド、エステル、イミ
ド、カーボネート、ニトロベンジル、フェナシルおよびベンゾイン基からなる群から選択
される員である開裂性部分を含んでなる。
ｅ．修飾された糖のペプチドへの結合
修飾された糖は、結合を媒介する適切な酵素を使用してグリコシル化または非グリコシ
ル化ペプチドに結合される。好ましくは修飾された供与体の糖（１つまたは複数）、酵素
（１つまたは複数）および受容体ペプチド（１つまたは複数）の濃度は、受容体が消費さ
れるまでグリコシル化が進行するように選択される。以下に検討する考察は、シアリルト
ランスルフェラーゼの内容について説明すると同時に、一般に他のグリコシルトランスフ
ェラーゼ反応に応用することできる。

グリコシルトランスフェラーゼを使用して所望のオリゴ糖構造を合成する多数の方法が
知られており、そして一般に本発明に応用することができる。例示方法は例えば、国際公
開第９６／３２４９１号パンフレット、Ｉｔｏ ｅｔ ａｌ．，Ｐｕｒｅ Ａｐｐｌ．Ｃ
ｈｅｍ．６５：７５３（１９９３）、および米国特許第５，３５２，６７０号、同第５，
３７４，５４１号および同第５，５４５，５５３明細書に記載されている。

本発明は単一のグリコシルトランスフェラーゼまたはグリコシルトランスフェラーゼの
組み合わせを使用して実施される。例えばシアリルトランスフェラーゼおよびガラクトシ
ルトランスフェラーゼの組み合わせを使用することができる。１以上の酵素を使用するそ
れらの態様では、酵素および基質は好ましくは最初の反応混合物で合わせられるか、また
は第２の酵素反応用の酵素および試薬はいったん第１酵素反応が完了したら、またはほぼ
完了したら反応媒質に加えられる。２つの酵素反応を１つの反応槽で順次行うことにより
、中間体種が単離される手順よりも全体的な収量が改善する。さらに過剰な溶媒および副
産物の洗浄および廃棄が減少する。

好適な態様では、各第１および第２酵素がグリコシルトランスフェラーゼである。別の
好適な態様では、１つの酵素がエンドグリコシダーゼである。別の好適な態様では、１つ
の酵素がエキソグリコシダーゼである。さらに好適な態様では、２より多くの酵素を使用
して本発明の修飾された糖タンパク質を集成する。酵素は、修飾された糖をペプチドに加
える前または後の任意の時点で、ペプチド上のサッカリド構造を改変させるために使用す
る。

別の好適な態様では、少なくとも２つの酵素がグリコシルトランスフェラーゼであり、
そしてペプチドのサッカリド構造に加えられる最後の糖は修飾されていない糖である。代
わりに修飾された糖がグリカン構造の内部にあり、したがってグリカン上に最終的な糖は
必要ない。例示態様では、ガラクトシルトランスフェラーゼはＧａｌ−ＰＥＧのＵＤＰ−
Ｇａｌ−ＰＥＧからグリカンへの転移を触媒することができ、続いてＳＴ３Ｇａｌ３およ
びＣＭＰ−ＳＡ（これは「キャッピング」する非修飾シアル酸をグリカンに加えるために
役立つ）の存在下でインキューベーションする（図２２Ａ）。

別の態様では、使用する少なくとも２つの酵素がグリコシルトランスフェラーゼであり
、そして少なくとも２つの修飾された糖がペプチド上のグリカン構造に加えられる。この
様式で、２以上の異なる複合糖質をペプチド上の１以上のグリカンに加えることができる
。この方法は、２以上の機能的に異なる修飾された糖を有するグリカン構造を生成する。
例示態様では、ペプチドとＧｎＴ−Ｉ、ＩＩとＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ−ＰＥＧとのインキ
ューベーションは、ＧｌｃＮＡｃ−ＰＥＧ分子をグリカンに付加するために役立ち；次い
でガラクトシルトランスフェラーゼとＵＤＰ−Ｇａｌのインキューベーションは、Ｇａｌ
残基をそれに付加するために役立ち；そしてＳＴ３Ｇａｌ３とＣＭＰ−ＳＡ−Ｍａｎ−６
−ホスフェートのインキューベーションは、ＳＡ−マンノース−６−ホスフェート分子の
グリカンへの付加に役立つ。この反応順序で、ＰＥＧ化グリカンの機能的特徴ならびにマ
ンノース−６−ホスフェート標的化活性を有するグリカン鎖をもたらす（図２２Ｂ）。

別の態様では、反応に使用する少なくとも２つの酵素がグリコシルトランスフェラーゼ
であり、そしてここでも異なる修飾された糖がペプチド上のＮ−結合およびＯ−結合グリ
カンに加えられる。この態様は２つの異なる修飾された糖がペプチドのグリカンに加えら
れるようになる時、しかしペプチド上の修飾された糖を互いに空間的に離すことが重要で
ある時に特に有用である。例えば修飾された糖が、限定するわけではないがＰＥＧおよび
リンカー分子のような他の分子を含む嵩高の分子を含んでなる時、この方法が好ましいか
もしれない。修飾された糖はペプチド上のグリカン構造に同時に加えるか、またはそれら
を順次加えてもよい。例示態様では、ＳＴ３Ｇａｌ３およびＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧとのイ
ンキューベーションは、シアル酸−ＰＥＧをＮ−結合グリカンに加えるために役立つが、
ＳＴ３Ｇａｌ１およびＣＭＰ−ＳＡ−ビスホスホネートとのインキューベーションはシア
ル酸−ビスホスホネートをＯ−結合グリカンへ加えるために役立つ（図２２Ｃ）。

別の態様では、この方法は１以上のエキソ−またはエンド−グリコシダーゼを使用する
。グリコシダーゼは典型的には突然変異体であり、これはグリコシル結合を破壊というよ
うは形成するように工作されている。突然変異体のグリカナーゼは時折、グリコシンター
ゼと呼ばれるが、典型的には活性部位の酸性アミノ酸残基にアミノ酸残基の置換を含む。
例えばエンドグリカナーゼがエンド−Ｈである時、置換される活性部位の残基は典型的に
は１３０位のＡｓｐ、１３２位のＧｌｕ、またはそれらの組み合わせである。アミノ酸は
一般にセリン、アラニン、アスパラギンまたはグルタミンに置換される。トランスシアリ
リダーゼのようなエキソグリコシダーゼも有用である。

突然変異酵素は通常、エンドグリカナーゼの加水分解工程の逆反応に準じる合成工程に
より反応を触媒する。これらの態様では、グリコシル供与体分子（例えば所望するオリゴ
−またはモノ−サッカリド構造）が脱離基を有し、そして反応は供与体分子をタンパク質
上のＧｌｃＮＡｃ残基へ加えることにより進行する。例えば脱離基はフルオリドのような
ハロゲンであることができる。別の態様では脱離基はＡｓｎまたはＡｓｎ−ペプチド部分
である。さらなる態様では、グリコシル供与体分子上のＧｌｃＮＡｃ残基が修飾される。
例えばＧｌｃＮＡｃ残基は１，２オキサゾリン部分を含んでなることができる。

好適な態様では、本発明の結合物を生成するために使用する各酵素は触媒量で存在する
。特定酵素の触媒量は、その酵素基質の濃度ならびに温度、時間、ｐＨ値のような反応条
件に従い変動する。予め選択した基質濃度および反応条件下での所定の酵素の触媒量を決
定する手段を、当業者は周知である。

上記方法が行なわれる温度は、ちょうど凍結より上から最も感受性の酵素が変性する温
度までの範囲で変動することができる。好適な温度範囲は約０℃から約５５℃、そしてよ
り好ましくは約３０℃から約３７℃である。別の例示態様では、本方法の１以上の成分が
好熱性酵素を使用して高温で行われる。

反応混合物は受容体がグリコシル化されるために十分な時間、維持され、これにより所
望の結合物を形成する。結合物の中にはしばしば数時間後に検出できるものもあり、回収
可能な量は通常、２４時間以内に得られる。当業者は反応速度は多数の可変性因子（例え
ば、酵素濃度、供与体濃度、受容体濃度、温度、溶媒容量）に依存し、これは選択する系
に至適化されると理解している。

本発明は修飾されたペプチドの工業的規模の生産も提供する。本明細書で使用するよう
に、工業的規模では一般に少なくとも１グラムの完成され、精製された結合物が生産され
る。

以下の検討では、本発明は修飾されたシアル酸分子のグリコシル化ペプチドへの結合に
より例示される。例示する修飾されたシアル酸はＰＥＧで標識される。以下の検討をＰＥ
Ｇ−修飾シアル酸およびグリコシル化ペプチドの使用に焦点をあてるのは具体的説明の明
瞭さのためであり、本発明がこれら２つのパートナーの結合に限定されることを意味する
ものではない。当業者はこの検討が一般にシアル酸以外の修飾されたグリコシル部分の付
加に応用できることを理解している。さらにこの検討は他の水溶性ポリマー、治療部分お
よび生体分子を含むＰＥＧ以外の作用物質を含むグリコシル単位の修飾にも等しく応用で
きる。

酵素的取り組みは、ＰＥＧ化またはＰＰＧ化炭水化物のペプチドまたは糖ペプチドへの
選択的導入に使用することができる。この方法はＰＥＧ、ＰＰＧ、または遮蔽された反応
性官能基を含む修飾された糖を利用し、そして適切なグリコシルトランスフェラーゼまた
はグリコシンターゼと組み合わせる。所望する炭水化物結合を作るグリコシルトランスフ
ェラーゼを選択し、そして供与体基質として修飾された糖を利用することにより、ＰＥＧ
またはＰＰＧをペプチド骨格に、糖ペプチドに既存の糖残基に、またはペプチドに加えら
れた糖残基に直接導入することができる。

シアリルトランスフェラーゼの受容体は本発明の方法により修飾されるペプチド上に、
天然に存在する構造として、または組換え的に、酵素的にまたは化学的にそこに配置され
たものとして存在する。適当な受容体には例えばＧａｌβ１，４ＧｌｃＮＡｃ、Ｇａｌβ
１，４ＧａｌＮＡｃ、Ｇａｌβ１，３ＧａｌＮＡｃ、ラクト−Ｎ−テトラオース、Ｇａｌ
β１，３ＧｌｃＮＡｃ、Ｇａｌβ１，３Ａｒａ、Ｇａｌβ１，６ＧｌｃＮＡｃ、Ｇａｌβ
１，４Ｇｌｃ（ラクトース）のようなガラクトシル受容体、および当業者に知られている
他の受容体を含む（例えば、Ｐａｕｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．
２５３：５６１７−５６２４（１９７８）を参照にされたい）。

１つの態様では、シアリルトランスフェラーゼの受容体は修飾されるペプチド上にペプ
チドのインビボ合成で存在する。そのようなペプチドは、ペプチドのグリコシル化パター
ンの前修飾無しで特許請求する方法を使用してシアリル化することができる。あるいは本
発明の方法を使用して、適切な受容体を含まないペプチドをシアリル化することができ；
最初にペプチドを当該技術分野で既知の方法により受容体を含むように修飾する。例示態
様では、ＧａｌＮＡｃ残基をＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼの作用により加える。

例示態様では、ガラクトシル受容体はガラクトース残基をペプチドに連結された適切な
受容体（例えばＧｌｃＮＡｃ）に結合することにより集成する。この方法には修飾される
ペプチドを適当量のガラクトシルトランスフェラーゼ（例えばｇａｌβ１，３またはｇａ
ｌβ１，４）および適当なガラクトシル供与体（例えばＵＤＰ−ガラクトース）を含む反
応混合物とインキューベーションすることを含む。反応は実質的に完了するまで進行する
ように行うか、あるいは反応は前以て選択した量のガラクトース残基が加えられた時に終
了する。選択したサッカリド受容体を集成する他の方法は、当業者には明らかである。

さらに別の態様では、ペプチド−結合オリゴ糖は最初に全体的または部分的「改作（ｔ
ｒｉｍｍｅｄ」されて、シアリルトランスフェラーゼの受容体または適当な受容体を得る
ために１以上の適切な残基を加えることができる部分のいずれかを露出する。グリコシル
トランスフェラーゼおよびエンドグリコシダーゼのような酵素（例えば米国特許第５，７
１６，８１２号明細書を参照にされたい）は、付加および改作反応に有用である。「改作
」およびＮ−結合およびＯ−結合グリカンの改造に関する詳細な検討は、本文献のいたる
ところに提供されている。

以下の検討では、本発明の方法が水溶性ポリマーを結合した修飾された糖の使用により
例示される。これに焦点をあてるのは具体的説明の明瞭さのためである。当業者はこの検
討は修飾される糖が治療部分、生体分子等を持つ態様にも等しく関連すると考えるだろう
。

修飾される糖を加える前に炭水化物残基が「改作」される本発明の例示態様を図１３に
説明し、これは高マンノースが第１世代の２アンテナ構造に戻し改作されるスキームを説
明する。水溶性ポリマーを持つ修飾された糖は、「戻し改作（ｔｒｉｍｍｉｎｇ ｂａｃ
ｋ」により露出した１以上の糖残基に結合される。１つの態様では水溶性ポリマーは水溶
性ポリマーに結合したＧｌｃＮＡｃ部分を介して加えられる。修飾されるＧｌｃＮＡｃは
２アンテナ構造の１または両末端マンノース残基に付けられる。あるいは非修飾ＧｌｃＮ
Ａｃを分岐種の１または両末端に加えることができる。

別の例示態様では、水溶性ポリマーが、末端マンノース残基上に加えられるＧｌｃＮＡ
ｃ残基に結合するガラクトース残基を有する修飾された糖を介して、２アンテナ構造の１
または両方の末端マンノース残基に加えられる。あるいは非修飾Ｇａｌを１または両方の
末端ＧｌｃＮＡｃ残基に加えることができる。

さらなる態様では、水溶性ポリマーが修飾されたシアル酸を使用してＧａｌ残基に加え
られる。

別の例示態様を図１４で説明し、これは図１３に示すスキームと同様であり、ここで高
マンノース構造がマンノースに「戻し改作」され、それから２アンテナ構造が分岐する。
１例では、水溶性ポリマーがポリマーで修飾されたＧｌｃＮＡｃを介して加えられる。あ
るいは非修飾ＧｌｃＮＡｃをマンノースに加え、続いて結合した水溶性ポリマーを持つＧ
ａｌを加える。さらに別の態様では、非修飾ＧｌｃＮＡｃおよびＧａｌ残基を順次マンノ
ースに加え、続いて水溶性ポリマーで修飾したシアル酸部分を加える。

図１５は図１３に類似したスキームを使用してさらなる例示態様を説明し、ここで高マ
ンノースをＧｌｃＮＡｃに「戻し改作」し、これに第１マンノースを結合させる。Ｇｌｃ
ＮＡｃは水溶性ポリマーを持つＧａｌ残基に結合する。あるいは非修飾ＧａｌをＧｌｃＮ
Ａｃに加え、続いて水溶性糖で修飾したシアル酸を加える。さらなる例では、末端Ｇｌｃ
ＮＡｃをＧａｌに結合し、そして続いてＧｌｃＮＡｃを水溶性ポリマーを持つ修飾された
フコースでフコシル化する。

図１６は図１３に示したものに類似するスキームであり、ここで高マンノースはペプチ
ドのＡｓｎに結合した第１ＧｌｃＮＡｃに戻し改作される。１例では、ＧｌｃＮＡｃ−（
Ｆｕｃ）_ａ残基のＧｌｃＮＡｃを、水溶性ポリマー持つＧｌｃＮＡｃに結合させる。別の
例では、ＧｌｃＮＡｃ−（Ｆｕｃ）_ａ残基のＧｌｃＮＡｃを、水溶性ポリマーを持つＧａ
ｌで修飾する。さらに別の態様では、ＧｌｃＮＡｃをＧａｌで修飾し、続いて水溶性ポリ
マーで修飾したシアル酸をＧａｌに結合する。

別の例示態様を図１７〜２１に説明する。本発明を実施することができる反応型の順序
の説明は、前述の各図面に提供されている。

上で説明した例は、本明細書で説明する方法の威力の具体的説明を提供する。本発明の
方法を使用して「戻し工作」し、そして実質的に任意の所望する構造の炭水化物残基に構
築することが可能である。修飾された糖は上記に説明したように炭水化物部分の末端に加
えることができ、あるいはこれはペプチドコアと炭水化物の末端との間の中間体となるこ
とができる。

例示態様では、既存のシアル酸はシアリダーゼを使用して糖ペプチドから除去し、これ
により元となるガラクトシル残基のすべてまたはほとんどを露出する（ｕｎｍａｓｋｉｎ
ｇ）。あるいはペプチドもしくは糖ペプチドをガラクトース残基、あるいはガラクトース
単位で終了したオリゴ糖残基で標識する。ガラクトース残基を露出または付加した後、適
切なシアリルトランスフェラーゼを使用して修飾されたシアル酸を加える。この取り組み
をスキーム１２にまとめる。

スキーム１３にまとめるさらなる取り組みでは、遮蔽した反応性官能基がシアル酸上に
存在する。遮蔽した反応基は好ましくは、修飾されたシアル酸をペプチドに結合するため
に使用する条件に影響を受けない。修飾されたシアル酸のペプチドへの共有結合後、遮蔽
を除き、そしてペプチドをＰＥＧ、ＰＰＧ、治療部分、生体分子または他の作用物質と結
合させる。作用物質は、修飾された糖残基上の露出した反応基との反応により特異的様式
でペプチドに結合する。

任意の修飾された糖は、糖ペプチドのオリゴ糖側鎖の末端糖に依存して、それに適切な
グリコシルトランスフェラーゼと使用することができる（表３）。上で検討したように、
ＰＥＧ化またはＰＰＧ化構造の導入に必要な糖ペプチドの末端糖は、発現中に天然に導入
できるか、あるいは適切なグリコシダーゼ（１つまたは複数）、グリコシルトランスフェ
ラーゼ（１つまたは複数）またはグリコシダーゼ（１つまたは複数）およびグリコシルト
ランスフェラーゼ（１つまたは複数）の混合を使用して発現後に生成することができる。

さらなる例示態様では、ＵＤＰ−ガラクトース−ＰＥＧを牛乳のβ１，４−ガラクトシ
ルトランスフェラーゼと反応させ、これにより修飾されたガラクトースを適切な末端Ｎ−
アセチルグルコサミン構造に転移させる。糖ペプチドの末端ＧｌｃＮＡｃ残基は、哺乳動
物、昆虫、植物または真菌のような発現系で起こるように発現中に生成され得るが、糖ペ
プチドを必要に応じてシアリダーゼおよび／またはグリコシダーゼおよび／またはグリコ
シルトランスフェラーゼで処理することにより生成することもできる。

別の例示態様では、ＧｎＴＩ−ＶのようなＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼをＰＥＧ化
−ＧｌｃＮＡｃを糖ペプチドのマンノース残基に転移するために利用する。さらなる例示
態様では、Ｎ−および／またはＯ−結合グリカン構造を糖ペプチドから酵素的に除去して
アミノ酸または末端グリコシル残基を露出し、次いでこれを修飾された糖に結合する。例
えばエンドグリカナーゼを使用して糖ペプチドのＮ−結合構造を除去して、末端ＧｌｃＮ
Ａｃを糖ペプチド上のＧｌｃＮＡｃ−結合−Ａｓｎとして露出する。ＵＤＰ−Ｇａｌ−Ｐ
ＥＧおよび適切なガラクトシルトランスフェラーゼを使用してＰＥＧ−またはＰＰＧ−ガ
ラクトース官能基を露出したＧｌｃＮＡｃ上に導入する。

別の態様では、修飾された糖は糖残基をペプチド骨格に転移することが知られているグ
リコシルトランスフェラーゼを使用してペプチド骨格に直接加える。この例示態様はスキ
ーム１４で説明する。本発明を実施するために有用なグリコシルトランスフェラーゼの例
には、限定するわけではないがＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼ（ＧａｌＮＡｃＴ１−１
４）、ＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼ、フコシルトランスフェラーゼ、グルコシルトラ
ンスフェラーゼ、キシロシルトランスフェラーゼ、マンノシルトランスフェラーゼ等を含
む。この取り組みの使用は、炭水化物を欠くペプチド上へ、あるいは既存の糖ペプチド上
への修飾された糖の直接的付加を可能とする。両方の場合で、修飾された糖の付加はグル
コシルトランスフェラーゼの基質特異性により定められるペプチド骨格上の特異的な位置
で起こり、そして化学的な方法を使用したタンパク質のペプチド骨格の修飾中に起こる様
式のような無作為の様式では起こらない。適当なアミノ酸配列をペプチド鎖に工作するこ
とにより、多くの作用物質がグルコシルトランスフェラーゼの基質ペプチド配列を欠くタ
ンパク質または糖ペプチドに導入され得る。

上に説明した各例示態様では、１以上のさらなる化学的または酵素的修飾工程を、修飾
された糖がペプチドに結合した後に利用することができる。例示態様では、酵素（例えば
フコシルトランスフェラーゼ）を使用してグルコシル単位（例えばフコース）をペプチド
に結合した末端修飾糖に付加（ａｐｐｅｎｄ）する。別の例では酵素反応を利用して修飾
された糖が結合できなかった部位を「キャップ」する。あるいは化学反応を利用して結合
した修飾糖の構造を改変させる。例えば結合した修飾糖を、修飾糖が結合しているペプチ
ド成分との結合を安定化または不安定化する作用物質と反応させる。別の例では、修飾さ
れた糖の成分をそのペプチドへの結合後に脱保護する。当業者は修飾された糖がペプチド
に結合した後の段階で本発明の方法に有用な多数の酵素的または化学的手順があると考え
るだろう。修飾された糖−ペプチド結合物のさらなる仕上げ（ｅｌａｂｏｒａｔｉｏｎ）
は、本発明の範囲内である。
マンノース−６−ホスフェートでのペプチドの標的化
例示態様では、ペプチドを少なくとも１つのマンノース−６−ホスフェート部分で誘導
化する。マンノース−６−ホスフェート部分はペプチドを細胞のリソソームに標的し、そ
して例えばリソソーム蓄積疾患（ｌｙｓｏｓｏｍａｌ ｓｔｏｒａｇｅ ｄｉｓｅａｓｅ
）の治療に治療用タンパク質をリソソームに標的するために有用である。

リソソーム蓄積疾患は、細胞のリソソーム内の糖脂質または多糖廃棄産物を分解する酵
素をコードする遺伝子の欠損の結果である４０を越える疾患群である。次いで酵素産物、
例えば糖および脂質は新たな生成物に再使用される。これら各疾患はリソソーム中の酵素
レベルに影響を及ぼす遺伝する常染色体またはＸ−結合劣性形質から生じる。一般に影響
を受けている個体の細胞および組織中には、影響を受けた酵素の生物学的または機能的活
性が無い。表４は代表的蓄積疾患および疾患に関連する酵素的欠失の一覧を提供する。そ
のような疾患では、酵素機能の欠乏が身体の細胞中のリソソームに脂質または炭水化物基
質の進行的な全身性の沈積を生じ、最終的には器官の機能損失および死を引き起こす。遺
伝的病因論、臨床的発現、分子生物学およびリソソーム蓄積疾患の可能性は、Ｓｃｒｉｖ
ｅｒ ｅｔ ａｌ．編集、遺伝疾患の代謝および分子的基礎（ＴＨＥ ＭＥＴＡＢＯＬＩ
Ｃ ＡＮＤ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＡＳＩＳ ＯＦ ＩＮＨＥＲＩＴＥＤ ＤＩＳＥＡ
ＳＥ）、７．ｓｕｐ．ｔｈ．Ｅｄ、Ｖｏｌ．ＩＩ、マグローヒル（１９９５）に詳細に記
載されている。

Ｄｅ Ｄｕｖｅは損失しているリソソーム酵素を外因性の生物学的に活性な酵素で代用
することがリソソーム蓄積疾患を処置する貴重な取り組みであると最初に提案した（Ｄｅ
Ｄｕｖｅ，Ｆｅｄ．Ｐｒｏｃ．２３：１０４５（１９６４））。その時から、酵素代替
治療が様々なリソソーム蓄積疾患を処置するために有益になり得るという種々の研究が提
案された。最高の成功は、胎盤から（Ｃｅｒｅｄａｓｅ（商標））またはより最近では組
換え的（Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標））に調製した外因性酵素（β−グルコセレブロシダー
ゼ）で処置したＩ型ゴーシェ病を持つ個体で示された。酵素代替はファブリー病ならびに
他のリソソーム蓄積疾患を処置するためにも有益であることが示唆された。例えばＤａｗ
ｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｅｄ．Ｒｅｓ．７（８）：６８４−６９０（１９７３）（イン
ビトロ）およびＭａｐｅｓ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ １６９：９８７（１９７０
）（インビボ）を参照にされたい。酵素代替治療の臨床試験は、正常血漿（Ｍａｐｅｓ
ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ １６９：９８７−９８９（１９７０））、胎盤から精製
したα−ガラクトシダーゼＡ（Ｂｒａｄｙ ｅｔ ａｌ．，Ｎ．Ｅｎｇ．Ｊ．Ｍｅｄ．２
７９：１１６３（１９７３））；または脾臓または血漿から精製したα−ガラクトシダー
ゼＡ（Ｄｅｓｎｉｃｋ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
７６：５３２６−５３３０（１９７９））の潅流を使用したファブリー患者について報告
され、そしてファブリー病の直接的酵素代替の生物化学的効力が証明された。これらの研
究は反復した酵素代替により病理学的な糖脂質蓄積を排除し、または有意に減少するため
の可能性を示す。例えば１つの実験では（Ｄｅｓｎｉｃｋ ｅｔ ａｌ．，同上）、精製
された酵素の静脈内注入で、蓄積される脂質物質、グロボトリアシルセラミドの血漿レベ
ルに一過性の減少がもたらされた。

したがって当該技術分野には、ヒトα−ガラクトシダーゼＡのような十分な量の生物学
的に活性なリソソーム酵素を、欠乏細胞に提供するための方法の必要性が存在する。最近
、組換え的な方法でこれらの必要性に取り組んだ、例えば米国特許第５，６５８，５６７
号、同第５，５８０，７５７明細書；Ｂｉｓｈｏｐ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ
．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８３：４８５９−４８６３（１９８６）；Ｍｅｄｉｎ ｅｔ
ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９３：７９１７−７９２２（
１９９６）；Ｎｏｖｏ，Ｆ．Ｊ．，Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ．４：４８８−４９２（１
９９７）；Ｏｈｓｈｉｍａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ
ＳＡ９４：２５４０−２５４４（１９９７）；およびＳｕｇｉｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．，
Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ ６：９０５−９１６（１９９５）を参照にされ
たい。マンノース−６−ホスフェートは治療用ペプチドがリソソームを標的とすることを
媒介し、本発明は十分量の生物学的に活性なリソソームペプチドを欠損細胞に送達するた
めの組成物および方法を提供する。

このように例示態様では、本発明はマンノース−６−ホスフェートで誘導化した表６に
よるペプチドを提供する（図２３および図２４）。ペプチドは組換え的または化学的に調
製することができる。さらにペプチドは完全に天然な配列であるか、または例えば短縮化
、延長により修飾することができ、あるいは置換または欠失を含んでもよい。本発明の方
法を使用して改造されるタンパク質の例は、グルコセレブロシダーゼ、β−グルコシダー
ゼ、α−ガラクトシダーゼＡ、酸性−α−グルコシダーゼ（酸性マルターゼ）を含む。臨
床的に使用する代表的な修飾されたペプチドには、限定するわけではないがＣｅｒｅｄａ
ｓｅ（商標）、Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標）およびＦａｂｒｙｚｙｍｅ（商標）を含む。修
飾され、そして臨床的に関連するペプチド上のグリコシル基も、本発明の方法を利用して
改変させることができる。マンノース−６−ホスフェートはグリコシル連結基を介してペ
プチドに結合させる。例示態様では、グリコシル連結基はシアル酸に由来する。シアル酸
−由来グリコシル連結基の例は表２に説明し、ここで１以上の"Ｒ"部分がマンノース−
６−ホスフェートまたは結合した１以上のマンノース−６−ホスフェート部分を有するス
ペーサー基である。修飾されたシアル酸部分は好ましくはペプチドの表面に結合したオリ
ゴ糖の末端残基である（図２５）。

マンノース−６−ホスフェートに加えて、本発明のペプチドは水溶性ポリマー、治療部
分、またはさらなる標的部分のような部分を用いて誘導化することができる。これらのお
よび他の基を結合する方法は本明細書で説明する。例示態様では、マンノース−６−ホス
フェート以外の基を、表２に従い誘導化されたシアル酸誘導体を介してペプチドに結合さ
せ、ここで１以上の"Ｒ"部分がマンノース−６−ホスフェート以外の基である。

例示態様では、Ｃｂｚ−保護グリシンに基づくリンカーアームで修飾されたシアル酸部
分を調製する。対応するヌクレオチド糖を調製し、そしてＣｂｚ基は触媒的水素添加によ
り除去する。生成するヌクレオチド糖は、利用可能な反応性アミンを有し、これを活性化
マンノース−６−ホスフェート誘導体と接触させて、本発明の方法の実施に有用であるマ
ンノース−６−ホスフェート誘導化ヌクレオチド糖を提供する。

以下のスキーム（スキーム１５）に示すように、活性化マンノース−６−ホスフェート
誘導体の例は、２−ブロモ−ベンジル−保護ホスホトリエステルを対応するトリフラート
にその場で転換し、そしてトリフラートと反応性酸素を含有する部分を有するリンカーと
を反応させ、糖とリンカーとの間にエーテル結合を形成することにより形成される。ベン
ジル保護基は触媒的水素添加により除去され、そしてリンカーのメチルエステルは加水分
解され、対応するカルボン酸を提供する。カルボン酸は当該技術分野で既知の方法により
活性化される。活性化手順の例は、カルボン酸のＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステル
への転換に依る。

別の例示態様では、以下のスキーム（スキーム１６）に示すように、Ｎ−アセチル化シ
アル酸をピルビル部分の操作によりアミンに転換する。このように１級ヒドロキシルをス
ルホン酸エステルに転換し、そしてアジ化ナトリウムと反応させる。アジドを対応するア
ミンに触媒的に還元する。続いて糖はヌクレオチド類似体に転換し、そしてアミン基を介
して上記のように調製したリンカーアーム−誘導化マンノース−６−ホスフェートにカッ
プリングする。

リソソーム蓄積疾患を処置するために有用なペプチドは、限定するわけではないがトラ
ンスフェリン、（血液脳関門をわたり、そしてエンドソームにペプチドを送達するために
）、カルニチン（ペプチドを筋肉細胞に送達するために）、およびホスホネート、例えば
ビスホスホネート（ペプチドを骨および他の炭酸カルシウムを含む組織を標的とさせるた
めに）を含む他の標的部分で誘導化することができる。標的部分および治療用ペプチドは
本明細書に記載する任意の方法または当該技術分野で既知の方法により結合される。

例示態様では、標的剤および治療用ペプチドはリンカー部分を介してカップリングされ
る。この態様では、少なくとも１つの治療用ペプチドまたは標的剤が本発明の方法に従い
、リンカー部分に完全なグリコシル連結基を介してカップリングされる。例示態様では、
リンカー部分にはポリ（エチレングリコール）のようなポリ（エーテル）を含む。別の例
示態様ではリンカー部分は、結合物を身体中の標的とする組織または領域に送達した後、
インビボで分解されて標的剤から治療用ペプチドを放出する少なくとも１つの結合を含む
。

さらに別の例示態様では、治療用ペプチドを標的部分に結合することなく治療部分のグ
リコホームの改変を介して治療部分のインビボ分布が改変される。例えば治療用ペプチド
はシアル酸（またはその誘導体）でグリコシル基の末端ガラクトース部分をキャッピング
することにより、網内系による取り込みからそらすことができる（図２３および２６）。
末端Ｇａｌを覆うシアリル化は、肝臓のアシアロ糖タンパク質（ＡＳＧＰ）レセプターに
よるペプチドの取り込みを回避し、そしてシアリル化が無い複雑なグリカン鎖のみを有す
るペプチドに比べてペプチドの半減期を伸ばすことができる。
ＩＩ．本発明のペプチド／糖ペプチド
１つの態様では、本発明は基本的なトリマンノシルコアを主要なグリカン構造としてペ
プチドに結合して有する１つのペプチドの多数のコピーを含んでなる組成物を提供する。
好適な態様では、ペプチドは治療用分子である。ペプチドの天然な形態は複雑なＮ−結合
グリカンを含んでなることができ、あるいは高マンノースグリカンでよい。ペプチドは哺
乳動物のペプチドでよく、そして好ましくはヒトのペプチドである。幾つかの態様では、
ペプチドは免疫グロブリン、エリスロポエチン、組織型アクチベーターペプチドおよびそ
の他からなる群から選択される（図１を参照にされたい）。

グリカンが本発明の方法を使用して改造できるペプチドの例を図１に説明する。

本発明に有用なペプチドのより詳細な一覧およびそれらの供給源を図１に提供する。

本発明の方法により修飾されるペプチドの他の例には、免疫グロブリンファミリーの員
（例えば抗体、ＭＨＣ分子、Ｔ細胞レセプター等）、細胞間レセプター（例えばインテグ
リン、ホルモンまたは増殖因子のレセプター等）レクチン、およびサイトカイン（例えば
インターロイキン）を含む。さらなる例にはとりわけ、組織プラスミノーゲンアクチベー
ター（ＴＰＡ）、レニン、第ＶＩＩＩ因子およびＩＸ因子のような凝固因子、ボンベシン
、トロンビン、造血増殖因子、コロニー刺激因子、ウイルス抗原、補体ペプチド、α１−
アンチトリプシン、エリトロポエチン、Ｐ−セレクチン糖ペプチドリガンド−１（ＰＳＧ
Ｌ−１）、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子、抗−トロンビンＩＩＩ、インター
ロイキン、インターフェロン、ペプチドＡおよびＣ、フィブリノーゲン、ｈｅｒｃｅｐｔ
ｉｎ（商標）、レプチン、グリコシダーゼを含む。ペプチドの一覧は例であり、排他的で
あると考えるべきではない。むしろ本明細書に提供する開示から明らかなように、本発明
の方法は所望するグリカン構造を形成することができる任意のペプチドに応用可能である
。

本発明の方法は、限定するわけではないがＩｇＧのような免疫グロブリンに由来する部
分を含むキメラペプチドを含むキメラペプチドの修飾にも有用である。

本発明の方法により修飾されるペプチドは合成または野生型ペプチドであることができ
、あるいはそれらは部位指向的突然変異誘発法のような当該技術分野で既知の方法により
生成される突然変異したペプチドであることができる。ペプチドのグリコシル化は典型的
にはＮ−結合またはＯ−結合である。Ｎ−結合の例は、修飾された糖のアスパラギン残基
の側鎖への結合である。トリペプチド配列アスパラギン−Ｘ−セリンおよびアスパラギン
−Ｘ−トレオニン（ここでＸはプロリンを除く任意のアミノ酸である）は、アスパラギン
側鎖への炭水化物部分の酵素的結合のための認識配列である。このようにペプチド中のこ
れらトリペプチド配列のいずれかの存在が潜在的なグリコシル化部位を作成する。本明細
書のいたるところで開示するように、Ｏ−結合グリコシル化は、１つの糖（例えばＮ−ア
セチルガラクトサミン、ガラクトース、マンノース、ＧｌｃＮＡｃ、グルコース、フコー
スまたはキシロース）の、ヒドロキシアミノ酸、好ましくはセリンまたはトレオニンのヒ
ドロキシ側鎖への結合を指すが、５−ヒドロキシプロリンまたは５−ヒドロキシリシンも
使用することができる。

本発明の数種の例示態様を、以下で検討する。これらの態様の幾つかは商用名で記載さ
れる名前を有するペプチド、および例示ペプチドとして他の具体的なペプチドを使用する
が、これらの例は具体的ペプチドに限定するものではない。以下の例示態様はすべてのペ
プチド均等物および任意のペプチドの変異体を含むことを意図している。そのような変異
体には限定するわけではないが、Ｎ−結合およびＯ−結合グリコシル化部位の付加または
削除、および加えたグリコシル化部位との融合タンパク質を含む。当業者は以下の態様お
よびそこに開示されている基本的方法が多くのペプチドに応用でき、等しく成功すると考
えるだろう。

１つの例示態様では、本発明は顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）を修飾するため
の方法を提供する。図２７Ａ〜２７Ｇは、本明細書に開示する方法論を使用してこれがど
のようになされるかの幾つかの例を説明する。図２７Ｂでは、哺乳動物細胞系で発現した
Ｇ−ＣＳＦペプチドをシアリダーゼを使用して戻し改作する。このように露出した残基は
、それに適切な供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１を使用してシアル酸−ポリ（エチレングリコ
ール）部分（ＰＥＧ部分）の付加により修飾される。図２７Ｃは昆虫細胞で発現したＧ−
ＣＳＦペプチドを修飾するための例示スキームを説明する。このペプチドは、それに適切
な供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトース部分を加えるこ
とにより修飾する。ガラクトース残基は、シアル酸−ＰＥＧ誘導体を介してＳＴ３Ｇａｌ
１の作用を通してＰＥＧで官能化される。図２７Ｄでは、細菌が発現したＧ−ＣＳＦをＮ
−アセチルガラクトサミン供与体およびＮ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼ
と接触させる。このペプチドはＰＥＧ化シアル酸供与体およびシアリルトランスフェラー
ゼを使用してＰＥＧで官能化する。図２７Ｅでは、哺乳動物細胞が発現したＧ−ＣＳＦを
レブリン酸で修飾したシアル酸供与体と接触させ、反応性ケトンをシアル酸供与体に加え
る。ペプチド上のグリカン上のグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−または
アミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図２７Ｆでは細菌が発現したＧ−ＣＳＦを、
ペプチドをエンド−ＧａｌＮＡｃ酵素と、これが加水分解的様式ではなく合成的に機能す
る条件下で接触させ、これによりＰＥＧ−Ｇａｌ−ＧａｌＮＡｃ分子をそれらの活性化誘
導体から加える。図２７Ｇは細菌が発現したＧ−ＣＳＦの別の改造経路を提供する。ポリ
ペプチドはＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクトサミン残基を用いて、ポリペプチドをＮ−アセ
チルガラクトサミントランスフェラーゼおよび適切なＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクトサミ
ンの供与体と接触させることにより誘導化する。

別の例示態様では、本発明は図２８Ａ〜２８Ｎに示すようにインターフェロンα−１４
Ｃ（ＩＦＮα１４Ｃ）を修飾する方法を提供する。様々なＩＦＮα形態を本明細書のいた
るところに開示する。図２８Ｂでは哺乳動物細胞で発現したＩＦＮα１４Ｃを最初にシア
リダーゼで処理してそれらの上のシアル酸単位を戻し改作し、そして次いでこの分子をＳ
Ｔ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸供与体を使用してＰＥＧ化する。図２８Ｃでは最初
にＮ−アセチルグルコサミンを昆虫もしくは真菌細胞で発現したＩＦＮα１４Ｃに加え、
ここで反応はＧｎＴ−Ｉおよび／またはＩＩの作用を介してＮ−アセチルグルコサミン供
与体を使用して行う。次いでポリペプチドはガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥ
Ｇ化−ガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化される。図２８Ｄでは酵母で発現したＩ
ＦＮα１４Ｃを最初にエンド−Ｈで処理してその上のグリコシル単位を戻し改作する。こ
の分子はガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクトース供与体を使用してガラクト
シル化し、そして次にこれをＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用して
ＰＥＧ化する。図２８Ｆでは哺乳動物細胞により生産されたＩＦＮα１４Ｃが、ＳＴ３Ｇ
ａｌ３およびＰＥＧ化−シアル酸の供与体を使用して修飾されてＰＥＧ部分が少しづつ動
かれされる（ｉｎｃｈｅｄ）。図２８Ｇでは昆虫または真菌細胞で発現したＩＦＮα１４
Ｃは、最初に１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶ、およびＮ−アセチルグルコサミ
ン供与体を使用してＮ−アセチルグルコサミンが加えられる。このタンパク質は次いで適
切な供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化される。次
いでＩＦＮα１４ＣはＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ
化される。図２８Ｈでは酵母が生産したＩＦＮα１４Ｃを最初にマンノシダーゼで処理し
てマンノシル基を戻し改作する。次いでＮ−アセチルグルコサミンが、Ｎ−アセチルグル
コサミンの供与体および１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用して加えられる
。さらにＩＦＮα１４Ｃは適切な供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用し
てガラクトシル化される。次いでポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸
の供与体を使用してＰＥＧ化される。図２８ＩではＮＳＯ細胞が発現したＩＦＮα１４Ｃ
を、適切な末端残基をレブリン酸で修飾したシアル酸供与体でキャッピングすることによ
り修飾し、これにより反応性ケトンをシアル酸供与体に付加する。ペプチドのグリコシル
残基へ加えた後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する
。図２８Ｊでは哺乳動物細胞により発現されたＩＦＮα１４Ｃが、ＰＥＧ−シアル酸の供
与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してＰＥＧ化される。図２８Ｋ
では哺乳動物細胞により生産されたＩＦＮα１４Ｃが最初にシアリダーゼを用いて末端シ
アル酸残基を戻し改作され、そして次に分子はトランス−シアリダーゼおよびＰＥＧ化シ
アル酸−ラクトース複合体を使用してＰＥＧ化される。図２８Ｌでは哺乳動物系で発現し
たＩＦＮα１４Ｃがシアル酸の供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使
用してシアル化される。図２８Ｍでは昆虫または真菌細胞で発現したＩＦＮα１４Ｃに、
最初に適切な供与体およびＧｎＴＩおよび／またはＩＩを使用してＮ−アセチルグルコサ
ミンが加えられる。次いで分子をガラクトシルトランスフェラーゼおよびリンカーを介し
て反応性シアル酸で誘導化したガラクトース供与体と接触させて、ポリペプチドをリンカ
ーおよびガラクトース残基を介して反応性シアル酸に結合させる。ついでポリペプチドを
ＳＴ３Ｇａｌ３およびトランスフェリンと接触させ、そしてこのようにしてシアル酸残基
を介してトランスフェリンが連結するようになる。図２８Ｎでは昆虫または酵母細胞のい
ずれかで発現したＩＦＮα１４Ｃを、最初にエンドグリカナーゼで処理してグリコシル基
を戻し改作し、そして次いでガラクトシルトランスフェラーゼおよびリンカーを介して反
応性シアル酸で誘導化されたガラクトース供与体と接触させて、ポリペプチドにリンカー
およびガラクトース残基を介して反応性シアル酸を結合させる。ついで分子をＳＴ３Ｇａ
ｌ３およびトランスフェリンと接触させ、そしてこのようにしてシアル酸残基を介してト
ランスフェリンが連結するようになる。

別の例示態様では、本発明は図２８Ｏ〜２８ＥＥに示すようにインターフェロンα−２
ａまたは２ｂ（ＩＦＮα）を修飾する方法を提供する。図２８Ｐでは哺乳動物細胞で生産
されたＩＦＮαを最初にシアリダーゼで処理してグリコシル単位を戻し改作し、そして次
いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸供与体を使用してＰＥＧ化する。図２８Ｑで
は昆虫細胞で発現したＩＦＮαを最初に適切な供与体およびガラクトシルトランスフェラ
ーゼを使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ１およびＰＥＧ化シアル酸
供与体を使用してＰＥＧ化する。図２８Ｒは細菌中で発現したＩＦＮαの別の改造方法を
提供する：ＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクトサミンは、適切な供与体およびＮ−アセチルガ
ラクトサミントランスフェラーゼを使用してタンパク質に加える。図２８Ｓでは哺乳動物
細胞で発現したＩＦＮαを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体を用いて適切な末端残
基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に加えることにより修飾する。ペプ
チドのグリコシル残基に加えた後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような
部分で誘導化する。図２８Ｔでは細菌で発現したＩＦＮαを、加水分解的様式の代わりに
合成的に機能する修飾された酵素であるエンド−Ｎ−アセチルガラクトサミダーゼを使用
して、およびＰＥＧ部分で誘導化したＮ−アセチルガラクトサミン供与体を使用してＰＥ
Ｇ化する。図２８ＵではＮ−アセチルガラクトサミンを最初に、適当な供与体およびＮ−
アセチルガラクトサミントランスフェラーゼを使用してＩＦＮαに加え、そして次いでシ
アリルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ化シアル酸供与体を使用してＰＥＧ化する。図２
８Ｖでは哺乳動物系で発現したＩＦＮαを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を
戻し改作し、そして次に適当な供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１および／またはＳＴ３Ｇａｌ
３を使用してＰＥＧ化する。図２８Ｗでは哺乳動物細胞で発現したＩＦＮαを最初にシア
リダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作する。次いでこのポリペプチドをＳＴ３Ｇａ
ｌ１およびリンカーで連結された２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポリペプチド
をリンカーおよび２番目のシアル酸残基を介して１つの反応性シアル酸に結合させる。続
いてポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３およびトランスフェリンと接触させ、そしてこのよう
にしてトランスフェリンがシアル酸残基を介して結合するようになる。図２８Ｙでは哺乳
動物細胞で発現したＩＦＮαを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し
、そして次にＳＴ３Ｇａｌ１およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。
図２８Ｚでは昆虫細胞により生産されたＩＦＮαを、ガラクトシルトランスフェラーゼお
よびＰＥＧ化ガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化する。図２８ＡＡでは細菌が発現
したＩＦＮαに、最初に適切な供与体およびＮ−アセチルガラクトサミントランスフェラ
ーゼを使用してアセチルガラクトサミンを加える。このタンパク質は次いで、シアリルト
ランスフェラーゼおよびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化される。図２８Ｃ
Ｃでは細菌で発現したＩＦＮαが別の手順で修飾される；ＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクト
サミンを、Ｎ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼによりＰＥＧ化Ｎ−アセチル
ガラクトサミンの供与体を使用してタンパク質に加える。図２８ＤＤでは細菌で発現した
ＩＦＮαを別のスキームで改造する。ポリペプチドを最初にＮ−アセチルガラクトサミン
トランスフェラーゼおよびリンカーを介して反応性シアル酸を用いて誘導化されたＮ−ア
セチルガラクトサミンの供与体と接触させて、ＩＦＮαをリンカーおよびＮ−アセチルガ
ラクトサミンを介して反応性のシアル酸に結合させる。次いでＩＦＮαをＳＴ３Ｇａｌ３
およびアシアロトランスフェリンと反応させて、これがシアル酸残基を介してトランスフ
ェリンに連結するようになる。次いでＩＦＮαはＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を
使用してシアル酸残基でキャッピングされる。細菌が発現したＩＦＮαを修飾するさらな
る方法を図２８ＥＥに開示し、ここでＩＦＮαは最初にＮＨＳ−ＣＯ−リンカー−ＳＡ−
ＣＭＰに暴露され、そして次いでリンカーを介して反応性シアル酸に連結される。これは
続いてＳＴ３Ｇａｌ３およびトランスフェリンを使用してトランスフェリンに結合する。

別の例示態様では、本発明は図２９Ａ〜２９Ｓで示すようにインターフェロンβ（ＩＦ
Ｎ−β）の修飾法を提供する。図２９Ｂでは哺乳動物系で発現したＩＦＮ−βを最初にシ
アリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作する。次いでタンパク質はＳＴ３Ｇａ
ｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化される。図２９Ｃは昆虫細胞に
より生産されたＩＦＮ−βを修飾するためのスキームである。最初にＮ−アセチルグルコ
サミンを、適切な供与体およびＧｎＴ−ｉおよび／または−ＩＩを使用してＩＦＮ−βに
加える。次いでタンパク質はガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼ
を使用してガラクトシル化される。最後にＩＦＮ−βはＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シ
アル酸の供与体を使用してＰＥＧされる。図２９Ｄでは酵母で発現したＩＦＮ−βを最初
にエンド−Ｈで処理してそのグリコシル鎖を戻し改作し、そして次いでガラクトース供与
体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次いでＳ
Ｔ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図２９Ｅでは哺
乳動物細胞で生産されたＩＦＮ−βを、ＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ部分ですでに誘導化
したシアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化することにより修飾する。図２９Ｆでは昆虫細
胞で発現したＩＦＮ−βは最初に、Ｎ−アセチルグルコサミン供与体を使用して１以上の
ＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶによりＮ−アセチルグルコサミンが加えられ、そして次
にガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化
され、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化さ
れる。図２９Ｇでは酵母で発現したＩＦＮ−βを最初にマンノシダーゼで処理してマンノ
シル単位を戻し改作し、次いでＮ−アセチルグルコサミン供与体および１以上のＧｎＴ
Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用してＮ−アセチルグルコサミンが加えられる。このタンパ
ク質はさらにガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラ
クトシル化され、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸供与体を使用して
ＰＥＧ化される。図２９Ｈでは哺乳動物細胞が発現したＩＦＮ−βを、レブリン酸で修飾
したシアル酸供与体で適切な末端残基でキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体
に加えることにより修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジ
ン−またはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図２９Ｉでは哺乳動物系で発現し
たＩＦＮ−βを、ＰＥＧ−シアル酸の供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラー
ゼを使用してＰＥＧ化する。図２９Ｊでは哺乳動物細胞により発現されたＩＦＮ−βを最
初にシアリダーゼで処理してその末端シアル酸残基を戻し改作し、次いでトランスシアリ
ダーゼおよびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図２９Ｋでは哺乳動物
細胞で発現したＩＦＮ−βを最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作
し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化し、そし
て次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化する。図２９Ｌでは
哺乳動物細胞で発現したＩＦＮ−βを最初にシアリダーゼおよびガラクトシダーゼで処理
してグリコシル鎖を戻し改作し、次いでガラクトース供与体およびα−ガラクトシルトラ
ンスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３またはシアリ
ルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図２９
Ｍでは哺乳動物細胞で発現したＩＦＮ−βを最初にシアリダーゼで処理してグリコシル単
位を戻し改作する。これを次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用
してＰＥＧ化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル
化する。図２９Ｎでは哺乳動物細胞で発現したＩＦＮ−βを、レブリン酸で修飾したシア
ル酸供与体で適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に加える
ことにより修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−また
はアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図２９Ｏでは哺乳動物細胞で発現したＩＦ
Ｎ−βを、シアル酸供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシア
リル化する。図２９Ｑでは昆虫細胞により発現されたＩＦＮ−βに、最初にＮ−アセチル
グルコサミンの供与体および１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用してＮ−ア
セチルグルコサミンを加え、そしてさらにＰＥＧ−ガラクトースの供与体およびガラクト
シルトランスフェラーゼを使用してさらにＰＥＧ化する。図２９Ｒでは酵母で発現したＩ
ＦＮ−βを最初にエンドグリカナーゼで処理してグリコシル基を戻し改作し、次いでガラ
クトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そ
して次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。
図２９Ｓでは哺乳動物系で発現したＩＦＮ−βを最初にＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカーを
介して連結された２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよ
び第２のシアル酸残基を介して１つの反応性シアル酸と連結する。次いでポリペプチドを
ＳＴ３Ｇａｌ３および脱シアリル化トランスフェリンと接触させ、そしてこのようにして
シアル酸残基を介してトランスフェリンが結合するようになる。次いでＩＦＮ−βはシア
ル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してさらにシアリル化される。

別の例示態様では、本発明は図３０Ａ〜３０Ｄに示す第ＶＩＩ因子または第ＶＩＩａ因
子を修飾するための方法を提供する。図３０Ｂでは哺乳動物系により生産された第ＶＩＩ
またはＶＩＩａ因子を最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、そ
して次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図
３０Ｃでは哺乳動物細胞により発現された第ＶＩＩまたはＶＩＩａ因子を最初にシアリダ
ーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥ
Ｇ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。さらにポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３お
よびシアル酸供与体でシアリル化する。図３０Ｄは哺乳動物細胞により生産される第ＶＩ
ＩまたはＶＩＩａ因子の別の修飾スキームを提供する：ポリペプチドを最初にシアリダー
ゼおよびガラクトシダーゼで処理してそのシアル酸およびガラクトース残基を戻し改作し
、次いでガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクトース供与体を使用してガラクト
シル化し、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ
化する。

別の例示態様では、本発明は第ＩＸ因子の修飾法を提供し、その幾つかの例が図３１Ａ
〜３１Ｇに含まれる。図３１Ｂでは哺乳動物細胞により生産された第ＩＸ因子を最初にシ
アリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＰＥＧ化シアル酸の
供与体を使用してＳＴ３Ｇａｌ３でＰＥＧ化する。図３１Ｃでは哺乳動物細胞により発現
された第ＩＸ因子を最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、これ
を次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化−シアル酸供与体を使用してＰＥＧ化し、そして
さらにＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化する。哺乳動物細胞が
生産した第ＩＸ因子の改造の別のスキームは、図３１Ｄに見いだすことができる。ポリペ
プチドを最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、次いでガラクト
ース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、さらに
シアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアリル化し、そして次いでＰＥＧ化シ
アル酸の供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１を使用してＰＥＧ化する。図３１Ｅでは哺乳動物系
で発現した第ＩＸ因子が、ＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＳＴ３Ｇａｌ３により触
媒されるシアリル化の方法を通してＰＥＧ化される。図３１Ｆでは哺乳動物細胞で発現し
た第ＩＸ因子を、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基をキャッピング
し、反応性ケトンをシアル酸供与体に加えることにより修飾する。ペプチドのグリコシル
残基への付加後、ケトンはヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化され
る。図３１Ｇは第ＩＸ因子のさらなる修飾法を提供する。哺乳動物細胞で生産されたポリ
ペプチドは、ＰＥＧ−シアル酸の供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを
使用してＰＥＧ化される。

別の例示態様では、本発明は濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）の修飾法を提供する。図３２
Ａ〜３２Ｊは幾つかの例を提示する。図３２Ｂでは、ＦＳＨが哺乳動物系で発現し、そし
てシアリダーゼで処理されて末端シアル酸残基が戻し改作され、続いてＳＴ３Ｇａｌ３お
よびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化されることにより修飾される。図３２
Ｃでは哺乳動物細胞で発現したＦＳＨを最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基
を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ
化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化する。図
３２Ｄは哺乳動物系で発現したＦＳＨを修飾するスキームを提供する。ポリペプチドをシ
アリダーゼおよびガラクトシダーゼで処理してそのシアル酸およびガラクトース残基を戻
し改作し、次いでガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用して
ガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用
してＰＥＧ化する。図３２Ｅでは哺乳動物系で発現したＦＳＨを以下の手順で修飾する：
ＦＳＨを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ
３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化し、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３お
よびシアル酸供与体を使用してシアリル化する。図３２Ｆは哺乳動物細胞により生産され
たＦＳＨの別の修飾例を提供する：ポリペプチドを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与
体で適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に加えることによ
り修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン
−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図３２Ｇでは哺乳動物系で発現したＦＳＨを別の手
順で修飾する：ポリペプチドは、シアル酸供与体およびα２，８−シアリルトランスフェ
ラーゼを使用したシアル酸の付加を用いて改造される。図３２ＨではＦＳＨを昆虫細胞で
発現させ、そして以下の手順で修飾する：Ｎ−アセチルグルコサミンを適切なＮ−アセチ
ルグルコサミン供与体および１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用して最初に
ＦＳＨに加え；次いでＦＳＨはＰＥＧ−ガラクトースの供与体およびガラクトシルトラン
スフェラーゼを使用してＰＥＧ化される。図３２Ｉは酵母により生産されたＦＳＨの修飾
スキームを表す。このスキームに従い、ＦＳＨを最初にエンドグリカナーゼで処理してグ
リコシル基を戻し改作し、ガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを
使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与
体でＰＥＧ化する。図３２Ｊでは哺乳動物細胞により発現されたＦＳＨを最初に、ＳＴ３
Ｇａｌ３およびリンカーを介した２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポリペプチド
をリンカーおよび２番目のシアル酸残基を介して１つの反応性シアル酸に結合させる。次
いでポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ１およびＣＨＯで生産された脱シアリル化絨毛性ゴナド
トロピン（ＣＧ）と接触させ、そしてこのようにしてＣＧが第２シアル酸残基を介して連
結するようになる。ついでＦＳＨはシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３および／または
ＳＴ３Ｇａｌ１を使用してシアリル化される。

別の例示態様では、本発明はエリトロポエチン（ＥＰＯ）の修飾法を提供し、図３３Ａ
〜３３Ｊは、野生型および突然変異ＥＰＯペプチドの両方の改造に関する幾つかの例を説
明する。図３３Ｂでは、種々の哺乳動物系で発現したＥＰＯが、発現したタンパク質をシ
アリダーゼと接触させて末端シアル酸残基を除去することにより改造される。生成したペ
プチドを、シアリルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ部分で誘導化したＣＭＰ−シアル酸
と接触させる。図３３Ｃでは昆虫細胞で発現したＥＰＯが、ＧｎＴ Ｉおよび／またはＧ
ｎＴ、ＩＩを使用してＮ−アセチルグルコサミンを用いて改造される。次いでガラクトー
スがガラクトシルトランスフェラーゼを使用してペプチドに加えられる。ＰＥＧ基は、改
造されたペプチドをシアリルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ部分で誘導化されたＣＭＰ
−シアル酸と接触させることにより改造されたペプチドに加えられる。図３３Ｄでは哺乳
動物細胞系で発現したＥＰＯが、シアリダーゼの作用を介して末端シアル酸を除去するこ
とにより改造される。ガラクトースはガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクトー
ス供与体を使用して新たに露出した末端に加えられる。Ｎ−結合グリコシル単位の末端ガ
ラクトース残基は、ＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアル酸で「キャッ
プ化」される。末端ガラクトース残基は、適切なシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１を
使用してＰＥＧ部分を持つシアル酸で官能化される。図３３Ｅでは哺乳動物細胞系で発現
したＥＰＯを、ＰＥＧ−誘導化シアル酸部分でＮ−結合グリコシル残基を官能化すること
により改造する。ペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３および適切な修飾されたシアル酸供与体と接
触させる。図３３Ｆでは昆虫細胞系で発現したＥＰＯが、ペプチドをＮ−アセチルグルコ
サミン供与体および１以上のＧｎＴＩ、ＧｎＴＩＩおよびＧｎＴＶと接触させることによ
り、１以上の末端Ｎ−アセチルグルコサミン残基を付加することにより改造される。次い
でペプチドはＰＥＧ化ガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼと接触
させることによりＰＥＧ化される。図３３Ｇでは昆虫細胞系で発現したＥＰＯを、適切な
Ｎ−アセチルグルコサミン供与体および１以上のＧｎＴＩ、ＧｎＴＩＩおよびＧｎＴＶを
使用して、末端Ｎ−アセチルグルコサミン残基を付加することにより改造する。加水分解
的様式ではなく合成的に作用するように作られたガラクトシダーゼを利用して、活性化Ｐ
ＥＧ化ガラクトース供与体をＮ−アセチルグルコサミン残基に加える。図３３Ｈでは哺乳
動物細胞で発現した突然変異ＥＰＯを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末
端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより改造する
。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧの
ような部分で誘導化する。図３３Ｉは哺乳動物細胞系で発現した突然変異ＥＰＯの例示改
造経路を説明する。ＰＥＧは、ＰＥＧ−修飾シアル酸およびα２，８−シアリルトランス
フェラーゼを使用してグリコシル残基へ加える。図３３Ｊは哺乳動物細胞系で発現した突
然変異ＥＰＯに関する別の例示改造経路を説明する。シアル酸はシアル酸供与体およびα
２，８−シアリルトランスフェラーゼでグリコシル残基に加えられる。

別の例示態様では、本発明は図３４Ａ〜３４Ｋに示すように顆粒球−マクロファージコ
ロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）の修飾法を提供する。図３４Ｂでは哺乳動物細胞で発現
したＧＭ−ＣＳＦを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、そして次
いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図３４Ｃ
では哺乳動物細胞で発現したＧＭ−ＣＳＦを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基
を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ
化し、そして次いでシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１および／またはＳＴ３Ｇａｌ３
を使用してさらにシアリル化する。図３４ＤではＮＳＯ細胞で発現したＧＭ−ＣＳＦを最
初にシアリダーゼおよびα−ガラクトシダーゼで処理してグリコシル基を戻し改作し、次
いでシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアリル化し、そして次いでＳＴ３
Ｇａｌ１およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図３４Ｅでは、哺乳
動物細胞で発現したＧＭ−ＣＳＦを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改
作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化し、そ
して次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してさらにシアリル化する。図３
４Ｆは哺乳動物細胞で発現したＧＭ−ＣＳＦを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で
適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより
修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−
ＰＥＧのような部分で誘導化する。図３４Ｇでは哺乳動物細胞で発現しＧＭ−ＣＳＦを、
シアル酸供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシアリル化する
。図３４Ｉでは昆虫細胞で発現したＧＭ−ＣＳＦが、適当な供与体および１以上のＧｎＴ
Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用したＮ−アセチルグルコサミンの付加、続いて適当な供与
体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用したＰＥＧ化ガラクトースの付加により
修飾される。図３４Ｊでは酵母が発現したＧＭ−ＣＳＦを最初にエンドグリカナーゼおよ
び／またはマンノシダーゼで処理してグリコシル単位を戻し改作し、そして続いてガラク
トシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化する
。図３４Ｋでは哺乳動物細胞で発現したＧＭ−ＣＳＦを最初にシアリダーゼで処理してシ
アル酸残基を戻し改作し、そして続いてＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用して
シアリル化する。次いでポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ１およびリンカーを介して連結され
た２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよび第２のシアル
酸残基を介して１つの反応性シアル酸に結合させる。ポリペプチドはさらにＳＴ３Ｇａｌ
３およびトランスフェリンと接触させ、そしてこのようにしてトランスフェリンと連結す
るようになる。

別の例示態様では、本発明はインターフェロンガンマ（ＩＦＮγ）の修飾法を提供する
。図３５Ａ〜３５Ｎは幾つかの例を含む。図３５Ｂでは、種々の哺乳動物細胞で発現した
ＩＦＮγを最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、そして続いて
ＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図３５Ｃでは
哺乳動物系で発現したＩＦＮγを最初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し
改作する。次いでポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用
してＰＥＧ化し、そしてさらにＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸の供与体を使用してシアリ
ル化する。図３５Ｄでは哺乳動物細胞が発現したＩＦＮγを最初にシアリダーゼおよびα
−ガラクトシダーゼで処理してシアル酸およびガラクトース残基を戻し改作する。次いで
ポリペプチドはガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガ
ラクトシル化される。次いでＩＦＮγはＰＥＧ−シアル酸の供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３
を使用してＰＥＧ化される。図３５Ｅでは哺乳動物系で発現したＩＦＮγを最初にシアリ
ダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作する。次いでポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ
３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化され、そしてさらにＳＴ３Ｇａｌ
３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化される。図３５Ｆは哺乳動物系で発現した
ＩＦＮγを修飾するための別の方法を記載する。タンパク質はレブリン酸で修飾したシア
ル酸供与体で適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加す
ることにより修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−ま
たはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図３５Ｇは哺乳動物細胞で発現したＩＦ
Ｎγは、シアル酸供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用したシアル
酸の付加により改造される。図３５Ｉでは昆虫または真菌細胞で発現したＩＦＮγが、適
切な供与体および１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用してＮ−アセチルグル
コサミンを付加することにより修飾される。このタンパク質はさらに、ＰＥＧ化ガラクト
ースの供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用したＰＥＧ部分の付加により
修飾される。図３５Ｊは酵母で発現したＩＦＮγを修飾するための方法を提供する。ポリ
ペプチドを最初にエンドグリカナーゼで処理してサッカリド鎖を戻し改作し、そして次に
ガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化す
る。次にＩＦＮγはＰＥＧ化シアル酸の供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してＰＥＧ化
される。図３５Ｋでは哺乳動物細胞により生産されたＩＦＮγが以下のように修飾される
：ポリペプチドを最初にＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカーを介して反応性ガラクトースで誘
導化されたシアル酸の供与体と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよびシアル酸残基
を介して反応性ガラクトースに結合させる。ついでポリペプチドをガラクトシルトランス
フェラーゼおよびエンドグリカナーゼで前処理したトランスフェリンと接触させ、そして
これによりトランスフェリンがガラクトース残基を介して連結するようになる。図３５Ｌ
に具体的に説明するスキームでは、哺乳動物系で発現したＩＦＮγがＳＴ３Ｇａｌ３の作
用を介して修飾され：ＰＥＧ化シアル酸が適当な供与体からＩＦＮγに転移する。図３５
Ｍは昆虫または真菌細胞で発現したＩＦＮγを修飾する例であり、ここでポリペプチドの
ＰＥＧ化はＧｎＴ Ｉおよび／またはＩＩを使用してＰＥＧ化Ｎ−アセチルグルコサミン
を供与体からＩＦＮγに転移することにより達成される。図３５Ｎでは哺乳動物系で発現
したＩＦＮγが、適当な供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用した
ＰＥＧ化シアル酸の付加により改造される。

別の例示態様では、本発明はα_１アンチ−トリプシン（α１−プロテアーゼインヒビタ
ー）の修飾法を提供する。そのような例の幾つかは図３６Ａ〜３６Ｏに見いだすことがで
きる。図３６Ｂでは、種々の哺乳動物細胞で発現したα_１アンチ−トリプシンを最初にシ
アリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作する。次いでＰＥＧ化シアル酸残基がＣＭ
Ｐ−ＳＡ−ＰＥＧのような適当な供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３のようなシアリルトランス
フェラーゼを使用して加えられる。図３６Ｃではα_１アンチ−トリプシン修飾の別のスキ
ームを示す。哺乳動物系で発現したα_１アンチ−トリプシンを最初にシアリダーゼで処理
してシアル酸残基を戻し改作する。次いでＰＥＧで誘導化されたシアル酸残基が、適当な
供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３のようなシアリルトランスフェラーゼを使用して加えられる
。続いて分子はシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用したシアル酸残基の付加によ
りさらに修飾される。図３６Ｄでは、哺乳動物細胞が発現したα_１アンチ−トリプシンを
最初にシアリダーゼおよびα−ガラクトシダーゼで処理して末端シアル酸およびα−結合
ガラクトース残基を戻し改作する。次いでポリペプチドはガラクトシルトランスフェラー
ゼおよび適当なガラクトース供与体を使用してガラクトシル化される。さらにＰＥＧで誘
導化したシアル酸が、ＰＥＧ化シアル酸供与体を使用してＳＴ３Ｇａｌ３の作用により加
えられる。図３６Ｅでは哺乳動物系で発現したα_１アンチ−トリプシンは最初に、シアリ
ダーゼを使用して末端シアル酸残基が戻し改作される。次いでＰＥＧが、ＰＥＧ化シアル
酸をＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧのような供与体からα_１アンチ−トリプシンへ転移することを
媒介するＳＴ３Ｇａｌ３の作用を介してＮ−結合グリコシル残基に加えられる。引き続き
より多くのシアル酸残基を、シアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用して結合させる
。図３６Ｆはα_１アンチ−トリプシンを改造する別の方法を具体的に説明する。哺乳動物
細胞で発現したα_１アンチ−トリプシンを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切
な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾
する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥ
Ｇのような部分で誘導化する。図３６Ｇはα_１アンチ−トリプシン修飾の別の方法を開示
する。哺乳動物発現系から得たα_１アンチ−トリプシンは、シアル酸供与体およびα２，
８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシアル酸の付加により改造する。図３６Ｉで
はα_１アンチ−トリプシンが昆虫または酵母細胞で発現し、そしてポリペプチドをＵＤＰ
−Ｎ−アセチルグルコサミンおよび１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶまたはＶと接触させ
ることにより、末端Ｎ−アセチルグルコサミン残基を付加することにより改造される。つ
いでこのポリペプチドは、ＰＥＧ化ガラクトースの供与体およびガラクトシルトランスフ
ェラーゼを使用してＰＥＧ部分を用いて修飾される。図３６Ｊは酵母細胞で発現したα_１
アンチ−トリプシンを最初にエンドグリカナーゼで処理してグリコシル鎖を戻し改作する
。これを次にガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクトース供与体を使用してガラ
クトシル化する。次にポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を
使用してＰＥＧ化される。図３６Ｋではα_１アンチ−トリプシンが哺乳動物系で発現する
。ポリペプチドを最初にＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカーを介して反応性ガラクトースで誘
導化されたシアル酸の供与体と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよびシアル酸残基
を介して反応性ガラクトースに結合させる。ついでポリペプチドをガラクトシルトランス
フェラーゼおよびエンドグリカナーゼで前処理したトランスフェリンと接触させ、そして
これによりトランスフェリンがガラクトース残基を介して連結するようになる。図３６Ｍ
では酵母で発現したα_１アンチ−トリプシンを最初にエンドグリカナーゼで処理してその
グリコシル基を戻し改作する。次いでタンパク質はガラクトシルトランスフェラーゼおよ
びＰＥＧ部分を持つガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化する。図３６Ｎでは植物細
胞で発現したα_１アンチ−トリプシンをヘキソサミニダーゼ、マンノシダーゼおよびキシ
ロシダーゼで処理してグリコシル鎖を戻し改作し、そして続いてＮ−アセチルグルコサミ
ントランスフェラーゼおよび適当な供与体を使用して、ＰＥＧ部分で誘導化されたＮ−ア
セチルグルコサミンで修飾する。図３６Ｏでは哺乳動物細胞で発現したα_１アンチ−トリ
プシンを、ＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧで誘導化したシアル酸の供与体を使用してＰＥＧ
化シアル酸残基を加えることにより修飾する。

別の例示態様では、本発明は図３７Ａ〜３７Ｋに示すグルコセレブロシダーゼ（β−グ
ルコシダーゼＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）またはＣｅｒｅｄａｓｅ（商標））の修飾法を提
供する。図３７Ｂでは、哺乳動物系で発現したＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）を最初にシアリ
ダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰ
ＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図３７Ｃでは哺乳動物細胞で発現した
Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標）を最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、
次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびマンノース−６−ホスフェートで誘導化した反応性シアル酸
を使用してマンノース−６−ホスフェート基を結合させ、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシ
アル酸供与体を使用してシアリル化する。図３７ＤではＮＳＯ細胞が発現したＣｅｒｅｚ
ｙｍｅ（商標）を最初にシアリダーゼおよびガラクトシダーゼで処理してグリコシル基を
戻し改作し、そして次いでガラクトース供与体およびα−ガラクトシルトランスフェラー
ゼを使用してガラクトシル化する。次いでマンノース−６−ホスフェート部分がＳＴ３Ｇ
ａｌ３およびマンノース−６−ホスフェートで誘導化した反応性シアル酸を使用して分子
に加えられる。図３７Ｅでは、哺乳動物細胞で発現したＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）を最初
にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、これを次いでＳＴ３Ｇａｌ３およ
びＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３および
シアル酸供与体を使用してシアリル化する。図３７Ｆでは、哺乳動物細胞で発現したＣｅ
ｒｅｚｙｍｅ（商標）を、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基をキャ
ッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾する。ペプチドの
グリコシル残基への付加後、ケトンを１以上のマンノース−６−ホスフェート基のような
部分で誘導化する。図３７Ｇは哺乳動物細胞で発現したＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）を、シ
アル酸供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシアリル化する。
図３７Ｉでは昆虫細胞で発現したＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）は、最初に適当な供与体およ
び１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用してＮ−アセチルグルコサミンが加え
られ、そして次にガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの供与体
を使用してＰＥＧ化される。図３７Ｊでは酵母で発現したＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）を最
初にエンドグリカナーゼで処理してグリコシル基を戻し改作し、次いでガラクトース供与
体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次にＳＴ
３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図３７Ｋでは哺乳
動物細胞で発現したＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）を、最初にＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカー
を介して連結した２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよ
び第２のシアル酸残基を介して１つの反応性シアル酸に結合させる。ついでポリペプチド
をＳＴ３Ｇａｌ３および脱シアリル化トランスフェリンと接触させ、そしてこれによりト
ランスフェリンが連結するようになる。次いでこのポリペプチドはシアル酸供与体および
ＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアリル化される。

別の例示態様では、本発明は組織プラスミノーゲンアクチベーター（ＴＰＡ）およびそ
の突然変異体の修飾法を提供する。幾つかの具体的修飾スキームを図３８Ａ〜３８Ｗに提
示する。図３８Ｂは１つの修飾手順を具体的に説明する：ＴＰＡが哺乳動物細胞により発
現された後、これを１以上のマンノシダーゼ（１つまたは複数）およびシアリダーゼで処
理してマンノシルおよび／またはシアル酸残基を戻し改作する。次いで末端Ｎ−アセチル
グルコサミンを、ポリペプチドと適切なＮ−アセチルグルコサミンおよび１以上のＧｎＴ
Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶとを接触させることにより加える。ＴＰＡはさらにガラクトー
ス供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化される。次い
でＰＥＧは、ＳＴ３Ｇａｌ３により触媒されるシアル化により、そしてＰＥＧ部分で誘導
化されたシアル酸の供与体を使用して分子に結合させる。図３８Ｃでは、ＴＰＡが昆虫ま
たは真菌細胞で発現する。修飾には、適切なＮ−アセチルグルコサミンの供与体およびＧ
ｎＴ Ｉおよび／またはＩＩを使用したＮ−アセチルグルコサミンの付加：ガラクトース
供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用したガラクトシル化：およびＳＴ３
Ｇａｌ３およびＰＥＧで誘導化されたシアル酸の供与体を使用したシアリル化によるＰＥ
Ｇの結合工程を含む。図３８Ｄでは、ＴＰＡが酵母で発現し、そして続いてエンドグリカ
ナーゼで処理されてサッカリド鎖を戻し改作する。ポリペプチドは、供与体からＴＰＡへ
のＰＥＧ−ガラクトースの転移を触媒するガラクトシルトランスフェラーゼの作用を介し
てさらにＰＥＧ化される。図３８Ｅでは、ＴＰＡが昆虫または酵母細胞で発現する。つい
でポリペプチドをα−およびβ−マンノシダーゼで処理して末端マンノシル残基を戻し改
作する。さらにＰＥＧ部分は、ガラクトシルトランスフェラーゼにより媒介される適当な
供与体からＴＰＡへのＰＥＧ−ガラクトースの転移を介して分子へ結合させる。図３８Ｆ
は昆虫または酵母系から得たＴＰＡの異なる修飾法を提供する：ポリペプチドは、Ｎ−ア
セチルグルコサミンの供与体およびＧｎＴ Ｉおよび／またはＩＩを使用したＮ−アセチ
ルグルコサミンの付加、続いてガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ化ガラクト
ースの供与体を使用したガラクトシル化により改造される。図３８Ｇは昆虫または酵母細
胞で発現したＴＰＡの別の改造スキームを提供する。末端Ｎ−アセチルグルコサミンは、
Ｎ−アセチルグルコサミンの供与体およびＧｎＴ Ｉおよび／またはＩＩを使用して加え
る。加水分解的様式というよりむしろ合成的に作用するように修飾されたガラクトシダー
ゼを利用して、適切な供与体からＮ−アセチルグルコサミン残基へＰＥＧ化ガラクトース
を加える。図３８Ｉでは、哺乳動物系で発現したＴＰＡを最初にシアリダーゼおよびガラ
クトシダーゼで処理してシアル酸およびガラクトース残基を戻し改作する。ポリペプチド
はさらに、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基をキャッピングし、反
応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾する。ペプチドのグリコシル残基
への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図
３８Ｊでは、哺乳動物系で発現したＴＰＡをこのスキームに従い改造する：最初にポリペ
プチドをα−およびβ−マンノシダーゼで処理して末端マンノシル残基を戻し改作する：
次いでシアル酸残基をシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用して末端ガラクトシル
残基に結合させる：さらにＴＰＡは、ガラクトシルトランスフェラーゼにより触媒される
供与体からＮ−アセチルグルコサミニル残基へのＰＥＧ化ガラクトースの転移を介してＰ
ＥＧ化される。図３８ＫではＴＰＡが植物細胞で発現する。この例の修飾手順は以下の通
りである：ＴＰＡを最初にヘキソサミニダーゼ、マンノシダーゼおよびキシロシダーゼで
処理してそのグリコシル基を戻し改作する；次いでＰＥＧ化Ｎ−アセチルグルコサミンを
、適当な供与体およびＮ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼを使用してＴＰＡに
加える。図３８Ｍでは、哺乳動物細胞で発現したＴＰＡ突然変異体（ＴＮＫ ＴＰＡ）を
改造する。末端シアル酸残基を最初にシアリダーゼを使用して戻し改作する；次いでポリ
ペプチドがＰＥＧ化されるようにＳＴ３Ｇａｌ３を使用してＰＥＧ化シアル酸を供与体か
らＴＮＫ ＴＰＡへ転移する。図３８Ｎでは、哺乳動物系で発現したＴＮＫ ＴＰＡを最
初にシアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作する。次いでタンパク質を、供
与体としてＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧおよびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してＰＥＧ化し、そしてさ
らにシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアリル化する。図３８Ｏでは、Ｎ
ＳＯ細胞が発現したＴＮＫ ＴＰＡを最初にシアリダーゼおよびα−ガラクトシダーゼで
処理して末端シアル酸およびガラクトース残基を戻し改作する。ついでＴＮＫ ＴＰＡは
、ガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化
される。この改造スキームの最終工程は、ＰＥＧ部分で誘導化されたシアル酸を、シアリ
ルトランスフェラーゼまたはＳＴ３Ｇａｌ３を使用して供与体からＴＮＫ ＴＰＡへ転移
することである。図３８ＱではＴＮＫ ＴＰＡが哺乳動物系で発現し、そして最初にシア
リダーゼで処理されて末端シアル酸残基が戻し改作される。次いでタンパク質はＳＴ３Ｇ
ａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してシアリル化される。次いでタンパク質
はシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアリル化される。図３８Ｒでは哺乳
動物系で発現したＴＮＫ ＴＰＡを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端
残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾する。
ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのよ
うな部分で誘導化する。図３８Ｓでは哺乳動物細胞で発現したＴＮＫ ＴＰＡを異なる方
法を介して修飾する：ポリペプチドは、シアル酸供与体およびα２，８−シアリルトラン
スフェラーゼを使用したシアル酸の付加により改造する。図３８Ｕでは、昆虫細胞で発現
したＴＮＫ ＴＰＡを、適当な供与体および１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを
使用してＮ−アセチルグルコサミンの付加により改造する。このタンパク質はさらに、Ｐ
ＥＧ化ガラクトースの供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用したＰＥＧ部
分の付加により修飾される。図３８Ｖでは、ＴＮＫ ＴＰＡは酵母で発現する。ポリペプ
チドを最初にエンドグリカナーゼで処理してそのグリコシル鎖を戻し改作し、そして次い
でＰＥＧで誘導化したガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用
してＰＥＧ化する。図３８ＷではＴＮＫ ＴＰＡが哺乳動物系で生産される。ポリペプチ
ドを最初に、ＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカーを介して反応性ガラクトースで誘導化したシ
アル酸の供与体と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよびシアル酸残基を介して反応
性ガラクトースに結合させる。次いでポリペプチドをガラクトシルトランスフェラーゼお
よびＣＨＯで生産された抗−ＴＮＦ ＩＧキメラと接触させて、これによりキメラはガラ
クトース残基を介して連結するようになる。

別の例示態様では、本発明はインターロイキン−２（ＩＬ−２）を修飾する方法を提供
する。図３９Ａ〜３９Ｇは幾つかの例を提供する。図３９Ｂは２段階の修飾スキームを提
供する：哺乳動物細胞により生産されたＩＬ−２を最初にシアリダーゼで処理してその末
端シアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供
与体を使用してＰＥＧ化する。図３９Ｃでは、昆虫細胞が発現したＩＬ−２を最初にガラ
クトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化する。
続いてＩＬ−２を、ＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化
する。図３９Ｄでは細菌で発現したＩＬ−２を、適切な供与体およびＮ−アセチルガラク
トサミントランスフェラーゼを使用してＮ−アセチルガラクトサミンで、続いてＰＥＧ−
シアル酸供与体およびシアリルトランスフェラーゼを用いたＰＥＧ化工程で修飾する。図
３９Ｅでは、哺乳動物系により生産されたＩＬ−２を修飾する別のスキームを提供する。
ポリペプチドを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基をキャッピング
し、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾する。ペプチドのグリコシ
ル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化す
る。図３９Ｆは大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で発現したＩＬ−２の改造例を具体的に説明する
。ポリペプチドは、ＰＥＧ基で誘導化した反応性Ｎ−アセチルガラクトサミン複合体およ
び加水分解的酵素というよりはむしろ合成的酵素として機能するように修飾された酵素を
使用してＰＥＧ化する。図３９Ｇでは、細菌が発現したＩＬ−２を適切な供与体およびＮ
−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼを使用してＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクト
サミンの付加により修飾する。

別の例示態様では、本発明は図４０Ａ〜４０Ｎに示すように第ＶＩＩＩ因子の修飾法を
提供する。図４０Ｂでは哺乳動物細胞で発現した第ＶＩＩＩ因子を最初にシアリダーゼで
処理してシアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル
酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４０Ｃでは、哺乳動物細胞で発現した第ＶＩＩＩ
因子を最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３
および適切な供与体を使用してＰＥＧ化し、そして次にＳＴ３Ｇａｌ１およびシアル酸供
与体を使用してさらにシアリル化する。

図４０Ｅでは、哺乳動物細胞が生産した第ＶＩＩＩ因子を、ＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥ
Ｇ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化の１工程により修飾する。図４０Ｆは哺乳動物
細胞により発現された第ＶＩＩＩ因子の別の修飾例を提供する。タンパク質は、ＳＴ３Ｇ
ａｌ１およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化される。図４０Ｇでは哺乳動
物細胞が発現した第ＶＩＩＩ因子を別のスキームに従い改造する：これはα２，８−シア
リルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化される。図
４０Ｉでは哺乳動物細胞により生産された第ＶＩＩＩ因子を、レブリン酸で修飾したシア
ル酸供与体で適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加す
ることにより修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−ま
たはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図４０Ｊでは哺乳動物細胞で発現した第
ＶＩＩＩ因子を、最初にエンド−Ｈで処理してグリコシル基を戻し改作する。ついでこれ
をガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの供与体を使用してＰＥ
Ｇ化する。図４０Ｋでは哺乳動物系で発現した第ＶＩＩＩ因子を、最初にＳＴ３Ｇａｌ３
およびシアル酸供与体を使用してシアリル化し、ついでエンド−Ｈで処理してグリコシル
基を戻し改作し、そして次いでガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクト
ースの供与体でＰＥＧ化する。図４０Ｌでは哺乳動物系で発現した第ＶＩＩＩ因子を、最
初にマンノダーゼで処理して末端マンノシル残基を戻し改作し、次いで適当な供与体およ
びＧｎＴ Ｉおよび／またはＩＩを使用してＮ−アセチルグルコサミン基を加え、そして
次にガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの供与体を使用してＰ
ＥＧ化する。図４０Ｍでは哺乳動物細胞で発現した第ＶＩＩＩ因子を最初にマンノダーゼ
で処理してマンノシル単位を戻し改作し、次いでＮ−アセチルグルコサミントランスフェ
ラーゼおよび適当な供与体を使用してＮ−アセチルグルコサミン基を加える。これはさら
にガラクトシルトランスフェラーゼおよびガラクトース供与体を使用してガラクトシル化
され、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化される。図
４０Ｎでは第ＶＩＩＩ因子が哺乳動物細胞で生産され、そして以下のように修飾される：
これは最初にマンノダーゼで処理して末端マンノシル基を戻し改作する。次いでＰＥＧ化
Ｎ−アセチルグルコサミン基が、ＧｎＴＩおよびＰＥＧ化Ｎ−アセチルグルコサミンの適
当な供与体を使用して加えられる。

別の例示態様では、本発明は図４１Ａ〜４１Ｍに示すようにウロキナーゼを修飾する方
法を提供する。図４１Ｂでは哺乳動物細胞で発現したウロキナーゼを最初にシアリダーゼ
で処理してシアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シア
ル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４１Ｃでは、哺乳動物細胞で発現したウロキナ
ーゼを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３
およびＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化し、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３およ
びシアル酸供与体を使用してシアリル化する。図４１Ｄでは哺乳動物系で発現したウロキ
ナーゼを最初にシアリダーゼおよびガラクトシダーゼで処理してグリコシル鎖を戻し改作
し、次いでガラクトース供与体およびα−ガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガ
ラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３またはシアリルトランスフェラーゼおよび
ＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４１Ｅでは哺乳動物細胞で発現し
たウロキナーゼを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、次いでＳＴ
３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化し、そして次にＳＴ３Ｇ
ａｌ３およびシアル酸供与体を使用してさらにシアリル化する。図４１Ｆでは哺乳動物細
胞で発現したウロキナーゼを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基を
キャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾する。ペプチ
ドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部
分で誘導化する。図４１Ｇでは哺乳動物細胞で発現したウロキナーゼを、シアル酸供与体
およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシアリル化する。図４１Ｉでは
昆虫細胞で発現したウロキナーゼを以下の工程で修飾する：最初にＮ−アセチルグルコサ
ミンを、Ｎ−アセチルグルコサミンの適当な供与体および１以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、Ｉ
ＶおよびＶを使用してポリペプチドに加え：次いでガラクトシルトランスフェラーゼおよ
びＰＥＧ−ガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化ガラクトースを加える。図４１Ｊで
は酵母で発現したウロキナーゼを最初にエンドグリカナーゼで処理してグリコシル基を戻
し改作し、次いでガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用して
ガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用
してＰＥＧ化する。図４１Ｋでは哺乳動物細胞で発現したウロキナーゼを、最初にＳＴ３
Ｇａｌ３およびリンカーを介して連結された２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポ
リペプチドをリンカーおよび第２シアル酸残基を介して１つの反応性シアル酸に結合させ
る。次いでポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ１および哺乳動物細胞で生産された脱シアリル化
ウロキナーゼと接触させ、そしてこれによりウロキナーゼの第２分子と連結するようにな
る。次いで全分子はさらにシアル酸供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１および／またはＳＴ３Ｇ
ａｌ３を使用してシアリル化される。図４１Ｌは単離したウロキナーゼを最初にスルホヒ
ドロラーゼで処理してスルフェート基を除去し、そして次にシアリルトランスフェラーゼ
およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４１Ｍでは単離したウロキ
ナーゼを最初にスルホヒドロラーゼおよびヘキソサミニダーゼで処理してスルフェート基
およびヘキソサミン基を除去し、そして次にガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥ
Ｇ−ガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化する。

別の例示態様では、本発明は図４２Ａ〜４２Ｋに示すようにＤＮａｓｅＩを修飾する方
法を提供する。図４２Ｂでは哺乳動物系で発現したＤＮａｓｅＩを以下の工程で修飾する
：最初にタンパク質をシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作する；次いでタン
パク質をＳＴ３Ｇａｌ３でＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４２Ｃ
では、哺乳動物細胞で発現したＤＮａｓｅＩを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残
基を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３でＰＥＧ−シアル酸供与体を使用してＰＥＧ化し
、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化する。図４２Ｄ
では哺乳動物系で発現したＤＮａｓｅＩを最初にシアリダーゼおよびガラクトシダーゼに
暴露してグリコシル基を戻し改作し、次いでガラクトース供与体およびα−ガラクトシル
トランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３またはシ
アリルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図
４２Ｅでは哺乳動物細胞で発現したＤＮａｓｅＩを最初にシアリダーゼで処理してシアル
酸残基を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸供与体を使用してＰ
ＥＧ化し、そして次にＳＴ３Ｇａｌ３でシアル酸供与体を使用してシアリル化する。図４
２Ｆでは哺乳動物細胞で発現したＤＮａｓｅＩを、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体
で適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することによ
り修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン
−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図４２Ｇでは哺乳動物細胞で発現したＤＮａｓｅＩ
を、シアル酸供与体およびα２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシアリル化
する。図４２Ｉでは昆虫細胞で発現したＤＮａｓｅＩには、最初に適当な供与体および１
以上のＧｎＴ Ｉ、ＩＩ、ＩＶおよびＶを使用してＮ−アセチルグルコサミンが加えられ
る。次いでタンパク質は、ガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトース
の供与体を使用してＰＥＧ化される。図４２Ｊでは酵母で発現したＤＮａｓｅＩを最初に
エンドグリカナーゼで処理してグリコシル単位を戻し改作し、次いでガラクトース供与体
およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ
３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４２Ｋでは哺乳
動物細胞で発現したＤＮａｓｅＩを、最初にＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカーを介して連結
された２つの反応性シアル酸残基と接触させて、ポリペプチドをリンカーおよび第２シア
ル酸残基を介して１つの反応性シアル酸に結合させる。次いでポリペプチドをＳＴ３Ｇａ
ｌ１および脱シアリル化α１−プロテアーゼインヒビターと接触させ、そしてこれにより
シアル酸残基を介してインヒビターと連結するようになる。次いでポリペプチドはさらに
適当な供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１および／またはＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアリル化
される。

別の例示態様では、本発明は図４３Ａ〜４３Ｌに示すようにＮグリコシル化部位を含む
ように突然変異させたインスリンを修飾する方法を提供する。図４３Ｂでは哺乳動物系で
発現したインスリンを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、そして
次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸供与体を使用してＰＥＧ化する。図４３Ｃ
では昆虫細胞で発現したインスリンを、適当な供与体およびＧｎＴ Ｉおよび／またはＩ
Ｉを使用してＰＥＧ化Ｎ−アセチルグルコサミンの付加により修飾する。図４３Ｄでは酵
母で発現したインスリンを最初にエンド−Ｈで処理してグリコシル基を戻し改作し、次い
でガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの供与体を使用してＰＥ
Ｇ化する。図４３Ｆでは哺乳動物細胞で発現したインスリンを、最初にシアリダーゼで処
理してシアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ１およびＰＥＧ−シアル酸
の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４３Ｇでは昆虫細胞で発現したインスリンを、適当
な供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してＰＥＧ化ガラクトースの付加
により修飾する。図４３Ｈでは細菌で発現したインスリンに最初に、適当な供与体および
Ｎ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼを使用してＮ−アセチルガラクトサミン
を加える。次いでポリペプチドはシアリルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−シアル酸の
供与体を使用してＰＥＧ化する。図４３Ｊでは細菌で発現したインスリンが異なる方法を
通して修飾される：ＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクトサミンを、適当な供与体およびＮ−ア
セチルガラクトサミントランスフェラーゼを使用してタンパク質に加える。図４３Ｋでは
細菌で発現したインスリンを以下の別のスキームに従い修飾する：ポリペプチドを最初に
Ｎ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼおよびリンカーを介した反応性シアル酸
で誘導化した反応性Ｎ−アセチルガラクトサミンと接触させて、ポリペプチドをリンカー
およびＮ−アセチルガラクトサミンを介して反応性シアル酸に結合させる。次いでポリペ
プチドをＳＴ３Ｇａｌ３およびアシアロ−トランスフェリンと接触させ、それゆえにトラ
ンスフェリンに連結するようになる。次いでポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル
酸供与体を使用してシアリル化される。図４３Ｌでは細菌で発現したインスリンをさらに
別の方法を使用して修飾する：ポリペプチドは最初にＮＨＳ−ＣＯ−リンカー−ＳＡ−Ｃ
ＭＰに暴露されて、リンカーを介して反応性シアル酸残基に連結するようになる。次いで
ポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３およびアシアロトランスフェリンを使用してトランスフェ
リンに連結される。次いでポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用し
てさらにシアリル化される。

別の例示態様では、本発明は図４４Ａ〜４４Ｋに示すようにＢ型肝炎抗原（Ｍ抗原−ｐ
ｒｅＳ２およびＳ）を修飾する方法を提供する。図４４ＢではＭ−抗原が哺乳動物系で発
現され、そして最初にシアリダーゼで処理されてシアル酸残基を戻し改作し、そして続い
てＳＴ３Ｇａｌ３およびリンカーを介して脂質Ａに連結した反応性シアル酸を使用して脂
質Ａに結合することにより修飾される。図４４Ｃでは哺乳動物細胞で発現したＭ−抗原を
、シアリダーゼで処理して末端シアル酸残基を戻し改作し、次いでＳＴ３Ｇａｌ１および
リンカーを介しトキシンに連結した反応性シアル酸を使用してリンカーを介して破傷風ト
キシンに結合し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル
化する。図４４Ｄでは哺乳動物系で発現したＭ−抗原を最初にガラクトシダーゼで処理し
てガラクトシル残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を
使用してシアリル化する。次いでポリペプチドは、ＳＴ３Ｇａｌ１および適当な供与体を
使用して加えたＫＬＨでシアル酸を誘導化する。図４４Ｅでは酵母で発現したＭ−抗原を
最初にマンノダーゼで処理してマンノシル残基を戻し改作し、そして次いでＧｎＴ Ｉお
よびジフテリアトキシンに連結したＮ−アセチルグルコサミンの供与体を使用してジフテ
リアトキシンに結合させる。図４４Ｆでは哺乳動物細胞が発現したＭ−抗原を、レブリン
酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基をキャッピングし、反応性ケトンをシアル
酸供与体に付加することにより修飾する。ペプチドのグリコシル残基への付加後、ケトン
をヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部分で誘導化する。図４４Ｇでは哺乳動物
系から得たＭ−抗原が、シアル酸供与体およびポリα２，８−シアリルトランスフェラー
ゼを使用したシアリル化により改造される。図４４Ｉでは昆虫細胞で発現したＭ−抗原を
、ＧｎＴ ＩＩおよびナイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）タンパク質に連結したＮ−アセ
チルグルコサミンの適当な供与体を使用することによりナイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ
）タンパク質に結合させる。図４４Ｊでは酵母が発現したＭ−抗原を、最初にエンドグリ
カナーゼで処理してグリコシル鎖を戻し改作し、そして次いでガラクトシルトランスフェ
ラーゼおよびナイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）タンパク質に連結されたガラクトースの
適切な供与体を使用してナイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）タンパク質に結合する。図４
４Ｋは酵母で発現したＭ−抗原の修飾の別の例である。ポリペプチドを最初にマンノダー
ゼで処理して末端マンノシル残基を戻し改作し、そして次いでＧｎＴ Ｉおよび／または
ＩＩを使用してＮ−アセチルグルコサミンを加える。続いてポリペプチドを、ガラクトー
ス供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次
いでシアリルトランスフェラーゼおよびシアル酸供与体を使用してシアル酸残基でキャッ
ピングする。

別の例示態様では、本発明は図４５Ａ〜４５Ｋに示すようにヒト成長ホルモン（Ｎ、Ｖ
およびそれらの変異体）を修飾する方法を提供する。図４５ＢではＮ−結合部位を含むよ
うに突然変異させたか、または哺乳動物により生産されたＮ−結合部位を有する天然に存
在するアイソフォーム（すなわち胎盤の酵素）のいずれかのヒト成長ホルモンを、最初に
シアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、そして続いてＳＴ３Ｇａｌ３を用い
て、そしてＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図４５Ｃでは昆虫細胞で
発現したヒト成長ホルモンが、ＧｎＴ Ｉおよび／またはＩＩおよびＰＥＧ化Ｎ−アセチ
ルグルコサミンの適切な供与体を使用してＰＥＧ化Ｎ−アセチルグルコサミンの付加によ
り修飾される。図４５Ｄでは、ヒト成長ホルモンを酵母で発現させ、エンド−Ｈで処理し
てグリコシル基を戻し改作し、そしてさらにＰＥＧ化ガラクトースの供与体を使用してガ
ラクトシルトランスフェラーゼを用いてＰＥＧ化する。図４５Ｆでは哺乳動物系で発現し
たヒト成長ホルモン−ムチン融合タンパク質を、最初にシアリダーゼで処理してシアル酸
残基を戻し改作し、そして続いてＰＥＧ−シアル酸の供与体およびＳＴ３Ｇａｌ１を使用
したＰＥＧ化により修飾する。図４５Ｇでは昆虫細胞で発現したヒト成長ホルモン−ムチ
ン融合タンパク質を、ガラクトシルトランスフェラーゼでＰＥＧ化ガラクトースの供与体
を使用したＰＥＧ化により改造する。図４５Ｈではヒト成長ホルモン−ムチン融合タンパ
ク質が細菌で生産される。Ｎ−アセチルガラクトサミンが最初にＮ−アセチルガラクトサ
ミントランスフェラーゼの作用によりＮ−アセチルガラクトサミンの供与体を使用して融
合タンパク質に加えられ、続いてＰＥＧ−シアル酸の供与体およびシアリルトランスフェ
ラーゼを使用して融合タンパク質をＰＥＧ化する。図４５Ｉでは細菌が発現したヒト成長
ホルモン−ムチン融合タンパク質の別の修飾スキームを記載する：融合タンパク質は、Ｐ
ＥＧ化Ｎ−アセチルガラクトサミンの供与体を使用してＮ−アセチルガラクトサミントラ
ンスフェラーゼの作用を介してＰＥＧ化される。図４５Ｊはヒト成長ホルモン−ムチン融
合タンパク質のさらなる改造スキームを提供する。融合タンパク質を最初にＮ−アセチル
ガラクトサミントランスフェラーゼおよびリンカーを介して反応性シアル酸で誘導化した
Ｎ−アセチルガラクトサミンの供与体と接触させて、融合タンパク質をリンカーおよびＮ
−アセチルガラクトサミンを介して反応性シアル酸に結合させる。次いで融合タンパク質
をシアリルトランスフェラーゼおよびアシアロ−トランスフェリンと接触させ、このよう
にしてシアル酸残基を介してトランスフェリンが連結するようになる。次いで融合タンパ
ク質は、ＳＴ３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアル酸残基でキャッピングす
る。図４５Ｋでは、細菌で生産されたヒト成長ホルモン（Ｎ）の修飾についてさらに別の
スキームを与える。ポリペプチドを最初にＮＨＳ−ＣＯ−リンカー−ＳＡ−ＣＭＰと接触
させ、そしてリンカーを介して反応性シアル酸とカップリングされるようになる。次いで
ポリペプチドをＳＴ３Ｇａｌ３およびアシアロ−トランスフェリンと接触させ、そしてシ
アル酸残基を介してトランスフェリンと連結するようになる。次いでポリペプチドはＳＴ
３Ｇａｌ３およびシアル酸供与体を使用してシアリル化される。

別の例示態様では、本発明は図４６Ａ〜Ｇに示すようにＴＮＦレセプターＩｇＧ融合タ
ンパク質（ＴＮＦＲ−ＩｇＧ、またはＥｎｂｒｅｌ（商標））を改造する方法を提供する
。図４６Ｂは哺乳動物系で発現したＴＮＦＲ−ＩｇＧが最初にシアル酸供与体およびシア
リルトランスフェラーゼ、ＳＴ３Ｇａｌ１でシアリル化され；次いで融合タンパク質がガ
ラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼでガラクトシル化され；次いで
融合タンパク質がＳＴ３Ｇａｌ３の作用およびＰＥＧで誘導化されたシアル酸の供与体を
介してＰＥＧ化される修飾手順を具体的に説明する。図４６Ｃでは哺乳動物細胞で発現し
たＴＮＦＲ−ＩｇＧを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作する。続い
てＰＥＧ部分は、ＳＴ３Ｇａｌ１により触媒される反応で供与体から融合タンパク質へＰ
ＥＧ化シアル酸を転移することによりＴＮＦＲ−ＩｇＧに結合させる。図４６ＤではＴＮ
ＦＲ−ＩｇＧが哺乳動物系で発現され、そしてＰＥＧ−ガラクトース供与体を使用したガ
ラクトシルトランスフェラーゼにより媒介されるガラクトシル化法を介したＰＥＧの付加
により修飾される。図４６ＥではＴＮＦＲ−ＩｇＧが哺乳動物系で発現される。融合タン
パク質の改造における第１工程は、シアル酸供与体およびシアリルトランスフェラーゼ、
ＳＴ３Ｇａｌ１を使用したＯ−結合シアル酸残基の付加である。続いてＰＥＧ化ガラクト
ースを、ガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ部分を有するガラクトースの適当
な供与体を使用して融合タンパク質に加える。図４６Ｆでは哺乳動物細胞で発現したＴＮ
ＦＲ−ＩｇＧを最初に、レブリン酸で修飾したシアル酸供与体で適切な末端残基をキャッ
ピングし、反応性ケトンをシアル酸供与体に付加することにより修飾する。融合タンパク
質のグリコシル残基への付加後、ケトンをヒドラジン−またはアミン−ＰＥＧのような部
分で誘導化する。図４６Ｇでは哺乳動物細胞で発現したＴＮＦＲ−ＩｇＧは、ＰＥＧ化シ
アル酸をＰＥＧ部分を持つシアル酸の供与体から融合タンパク質へ転移する反応を触媒す
る２，８−シアリルトランスフェラーゼにより改造する。

別の例示態様では、本発明は図４７Ａ〜４７Ｄに示すようにＨｅｒｅｃｅｐｔｉｎ（商
標）結合物の生成法を提供する。図４７ＢではＨｅｒｅｃｅｐｔｉｎ（商標）を哺乳動物
系で発現させ、そして最初にガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼ
を使用してガラクトシル化する。次いでＨｅｒｅｃｅｐｔｉｎ（商標）は、反応性シアル
酸−トキシン複合体を使用してＳＴ３Ｇａｌ３の作用を通してシアル酸を介してトキシン
に結合させる。図４７Ｃでは哺乳動物細胞または真菌のいずれかで生産されたＨｅｒｅｃ
ｅｐｔｉｎ（商標）は、ガラクトシルトランスフェラーゼおよび反応性ガラクトース−ト
キシン複合体を使用してガラクトシル化の工程を通してトキシンに結合させる。図４７Ｄ
はＨｅｒｅｃｅｐｔｉｎ（商標）結合物の別の作成スキームを含む：真菌で生産されたＨ
ｅｒｅｃｅｐｔｉｎ（商標）を最初にエンド−Ｈで処理してグリコシル基を戻し改作し、
次いでガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクトシ
ル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３および反応性シアル酸−放射性同位体複合体を使用
することによるシアリル化により放射性同位体と結合させる。

別の例示態様では、本発明は図４８Ａ〜４８Ｄに示すようにＳｙｎａｇｉｓ（商標）結
合物の生成法を提供する。図４８Ｂでは哺乳動物細胞で発現したＳｙｎａｇｉｓ（商標）
を最初にガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラクト
シル化し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化さ
れる。図４８Ｃでは哺乳動物または真菌細胞で発現したＳｙｎａｇｉｓ（商標）は、ガラ
クトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの供与体を使用してＰＥＧ化す
る。図４８Ｄは発現したＳｙｎａｇｉｓ（商標）を最初にエンド−Ｈで処理してグリコシ
ル基を戻し改作し、次いでガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを
使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与
体を使用してＰＥＧ化する。

別の例示態様では、本発明は図４９Ａ〜４９Ｄに示すようにＲｅｍｉｃａｄｅ（商標）
結合物の生成法を提供する。図４９Ｂでは哺乳動物系で発現したＲｅｍｉｃａｄｅ（商標
）を最初にガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してガラク
トシル化し、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化
する。図４９Ｃでは哺乳動物系で発現したＲｅｍｉｃａｄｅ（商標）は、適当な供与体お
よびガラクトシルトランスフェラーゼを使用してＰＥＧ化ガラクトースの付加により修飾
する。図４９Ｄは真菌で発現したＲｅｍｉｃａｄｅ（商標）を最初にエンド−Ｈで処理し
てグリコシル鎖を戻し改作し、次いでガラクトース供与体およびガラクトシルトランスフ
ェラーゼを使用してガラクトシル化し、そして次いでＳＴ３Ｇａｌ３および放射性同位体
で誘導化した反応性シアル酸を使用して放射性同位体に結合する。

別の例示態様では、本発明はＮグリコシル化部位を含むように突然変異させたＲｅｏｐ
ｒｏを修飾する方法を提供する。図５０Ａ〜５０Ｌはそのような例を含む。図５０Ｂでは
哺乳動物系で発現したＲｅｏｐｒｏを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し
改作し、そしてＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する
。図５０Ｃでは昆虫細胞で発現したＲｅｏｐｒｏを、適当な供与体およびＧｎＴ Ｉおよ
び／またはＩＩを使用したＰＥＧ化Ｎ−アセチルグルコサミンの付加により修飾する。図
５０Ｄでは酵母で発現したＲｅｏｐｒｏを最初にエンド−Ｈで処理してグリコシル基を戻
し改作する。続いてタンパク質はガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラク
トースの供与体を使用してＰＥＧする。図５０Ｆでは哺乳動物細胞で発現したＲｅｏｐｒ
ｏを最初にシアリダーゼで処理してシアル酸残基を戻し改作し、そして次いでＳＴ３Ｇａ
ｌ１で、ＰＥＧ化シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図５０Ｇでは昆虫細胞で発
現したＲｅｏｐｒｏを、ガラクトシルトランスフェラーゼおよびＰＥＧ−ガラクトースの
供与体を使用してＰＥＧ化により修飾する。図５０Ｈでは細菌で発現したＲｅｏｐｒｏは
最初に、Ｎ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼおよび適当な供与体を使用して
Ｎ−アセチルグルコサミンが加えられる。次いでタンパク質はシアリルトランスフェラー
ゼおよびＰＥＧ−シアル酸の供与体を使用してＰＥＧ化する。図５０Ｊでは細菌で発現し
たＲｅｏｐｒｏが異なるスキームで修飾される：これはＰＥＧ化Ｎ−アセチルガラクトサ
ミンの供与体を使用して、Ｎ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼの作用を介し
たＰＥＧ化である。図５０Ｋでは細菌で発現したＲｅｏｐｒｏを別の方法で修飾する：最
初にポリペプチドをＮ−アセチルガラクトサミントランスフェラーゼおよびリンカーを介
して反応性シアル酸で誘導化したＮ−アセチルガラクトサミンの供与体と接触させて、ポ
リペプチドをリンカーおよびＮ−アセチルガラクトサミンを介して反応性シアル酸に結合
させる。次いでポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３およびアシアロ−トランスフェリンと接触
させ、これによりシアル酸残基を介してトランスフェリンに連結するようになる。次いで
ポリペプチドは適当な供与体およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してシアル酸残基でキャッピン
グする。図５０Ｌでは細菌で発現したＲｅｏｐｒｏのさらなる修飾スキームを提供する。
ポリペプチドを最初にＮＨＳ−ＣＯ−リンカー−ＳＡ−ＣＭＰに暴露して、リンカーを介
して反応性シアル酸に連結するようにする。次いでポリペプチドはＳＴ３Ｇａｌ３および
アシアロ−トランスフェリンと接触させ、そしてこのようにしてシアル酸残基を介してト
ランスフェリンと連結するようにする。次いでポリペプチドは適切な供与体およびＳＴ３
Ｇａｌ３を使用してシアル酸残基でキャッピングする。

別の例示態様では、本発明はＲｉｔｕｘａｎ（商標）結合物を生産する方法を提供する
。図５１Ａ〜５１Ｇはその幾つかの例を提示する。図５１Ｂでは種々の哺乳動物系で発現
したＲｉｔｕｘａｎ（商標）は、最初に適切なガラクトース供与体およびガラクトシルト
ランスフェラーゼを使用してガラクトシル化される。次いでペプチドは、シアル酸供与体
およびＳＴ３Ｇａｌ３を使用してトキシン部分で誘導化したシアル酸で官能化される。図
５１Ｃでは哺乳動物細胞または真菌細胞で発現したＲｉｔｕｘａｎ（商標）を、ガラクト
シルトランスフェラーゼおよびガラクトース供与体を使用してガラクトシル化し、これは
薬剤部分を含有するペプチドガラクトースを提供する。図５１Ｄでは真菌系で発現したＲ
ｉｔｕｘａｎ（商標）を改造する別の例を提供する。ポリペプチドのグリコシル基を最初
にエンド−Ｈを使用して戻し改作する。次いでガラクトシルトランスフェラーゼおよびガ
ラクトース供与体を使用してガラクトースを加える。続いて放射性同位体を、放射同位体
−複合化シアル酸供与体およびシアリルトランスフェラーゼ、ＳＴ３Ｇａｌ３を介して分
子に結合させる。図５１ＦではＲｉｔｕｘａｎ（商標）を哺乳動物系で発現させ、そして
最初にガラクトシルトランスフェラーゼおよび適切なガラクトース供与体を使用してガラ
クトシル化し；ＰＥＧ部分を持つシアル酸を、次いでＳＴ３Ｇａｌ３およびＰＥＧ化シア
ル酸供与体を使用して分子に結合させる。図５１Ｇに示すように、真菌、酵母または哺乳
動物細胞で発現したＲｉｔｕｘａｎ（商標）は以下の方法で修飾することもできる：最初
にポリペプチドをα−およびβ−マンノシダーゼで処理して末端マンノシル残基を除去す
る；次いでＧｌｃＮＡｃを、ＧｎＴ−Ｉ、ＩＩおよびＧｌｃＮＡｃ供与体を使用して分子
に結合させ、次いでガラクトシルトランスフェラーゼおよび放射性同位体を結合すること
ができる錯化部分にカップリングしたガラクトースの供与体を使用したガラクトシル化に
より放射性同位体を結合する。
Ａ．Ｎ−結合グルコシル化部位の作成または排除
本発明は、ペプチド上のグリカン鎖（１つまたは複数）の部位が天然なペプチドグリカ
ン鎖から改変されたペプチドの使用を意図する。典型的にはＮ−結合グリカン鎖はアスパ
ラギン残基で１次ペプチド構造に連結され、ここでアスパラギン残基は小胞体（ＥＲ）内
の膜−結合グリコシルトランスフェラーゼにより認識されるアミノ酸配列内にある。典型
的には１次ペプチド構造上の認識部位は配列アスパラギン−Ｘ−セリン／トレオニでンあ
り、ここでＸはプロリンおよびアスパラギン酸を除く任意のアミノ酸であることができる
。この認識部位は典型的なものであるが、本発明はさらに、Ｎ−結合鎖が天然なまたは組
換えグリコシルトランスフェラーゼを使用して加えられた他の認識部位にＮ−結合グリカ
ン鎖を有するペプチドを包含する。

ペプチドのＮ−結合グリコシル化の認識部位は知られているので、天然なＮ−結合グリ
コシル化認識部位が除去されるか、あるいはさらに１以上のさらなるＮ−グリコシル化認
識部位が作成される突然変異した１次ペプチド配列を作成することは十分に当業者の技術
範囲内である。最も単純な場合では、アスパラギン残基をペプチドの１次配列から除去し
、これによりグリカンの結合部位を除去し、このようにして成熟ペプチドから１つのグリ
カンを除去することができる。例えばアスパラギン−セリン−セリンの配列をもつ天然な
認識部位は、配列ロイシン−セリン−セリンを有するように遺伝的に操作して、この位置
でのＮ−結合グリコシル化部位を排除することができる。

さらにＮ−結合グリコシル化部位は、たとえアスパラギン残基が存在しても１以上のさ
らなる認識残基が存在しないように、認識部位中の残基を改変することにより除去するこ
とができる。例えばアスパラギン−セリン−セリンの天然な配列をアスパラギン−セリン
−リシンに突然変異させて、これによりその位置でのＮ−グリコシル化部位を排除するこ
とができる。上記の典型的な認識部位以外の残基を含んでなるＮ−結合グリコシル化部位
の場合では、当業者は適切なグリコシルトランスフェラーゼにより認識されるために必要
な配列および残基を決定し、そして次に適切なグリコシルトランスフェラーゼがもはやそ
の部位を認識しないように少なくとも１つの残基を突然変異させることができる。換言す
ると、グリコシル化部位の作成または除去、あるいは両方を行い、これにより改変された
グリコシルパターンを有するペプチドを生成するために、ペプチドの１次配列を操作する
ことは十分に当業者の技術範囲内である。したがって本発明はグリカン改造の唯一の配列
として本明細書に提供する１次ペプチド配列に限定されると解釈するべきではなく、むし
ろグリカン改造に適する任意かつすべてのペプチド配列を含むと解釈するべきである。

突然変異ペプチドを作成するために、天然なアミノ酸残基をコードする天然なコドンを
突然変異させて別のアミノ酸残基をコードするコドンを生成するように、ペプチドの１次
配列をコードする核酸配列を改変させる。核酸配列を改変させる技術は当該技術分野で一
般的であり、そして例えば任意の周知な分子生物学マニュアルに記載されている。

さらに１次ペプチド構造をコードする核酸は、標準的な技術を使用してインビトロで合
成することができる。例えば核酸分子はホスホロアミダイト法のようなプロトコールを使
用する「遺伝子機械」で合成することができる。化学的に合成した二本鎖ＤＮＡが核酸ま
たはそのフラグメントの合成のような応用に必要な場合、各相補鎖を別個に合成する。短
い核酸（６０〜８０塩基対）の生成は技術的には単純であり、そして相補鎖を合成し、そ
して続いてそれらをアニーリングすることにより行うことができる。長い核酸（＞３００
塩基対）の生成については、化学的なＤＮＡ合成中の各サイクルのカップリング効率がめ
ったに１００％とはならないので特別な方法が必要かもしれない。この問題を克服するた
めに、合成遺伝子（二本鎖）を、２０〜１００ヌクレオチド長の一本鎖であるフラグメン
トからの組み立て形態で集成する。ポリヌクレオチド合成に関する総説は、例えばＧｌｉ
ｃｋ ａｎｄ Ｐａｓｔｅｒｎａｋ（モレキュラーバイオテクノロジー、組換えＤＮＡの
原理および応用：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｐｒｉｎｃｉｐｌ
ｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡ）、
１９９４、ＡＳＭ出版）、Ｉｔａｋｕｒａ ｅｔ ａｌ．，（１９８４，Ａｎｎｕ，Ｒｅ
ｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．５３：３２３）、およびＣｌｉｍｉｅ ｅｔ ａｌ．，（１９９０
，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ'ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：６３３）を参照にされたい
。

さらにペプチドをコードする核酸配列中の変化は部位指向的突然変異誘発法により作成
することができる。明らかであるように、この技術は典型的には一本鎖および二本鎖状態
の両方で存在するファージベクターを使用する。部位指向的突然変異誘発法に有用な典型
的なベクターには、Ｍ１３ファージのようなベクターを含む。これらのファージは容易に
入手可能であり、そしてそれらの使用は当業者にとって周知である。二本鎖プラスミドも
部位指向的突然変異誘発法に日常的に使用され、これは問題の核酸をプラスミドからファ
ージへ移す工程を排除する。

一般に部位指向的突然変異誘発法は最初に、その配列内に所望のペプチドをコードする
ＤＮＡ配列を含む一本鎖ベクターを得るか、または二本鎖ベクターの二本鎖を融解するこ
とにより行なわれる。所望の突然変異した配列を持つオリゴヌクレオチドプライマーを一
般には合成的に調製する。このプライマーを次いで一本鎖ベクターとアニーリングし、そ
して突然変異を持つ鎖の合成を完成するために大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ポリメラーゼＩク
レノーフラグメントのようなＤＮＡ重合酵素に供する。これによりヘテロ二本鎖が形成さ
れ、ここで１つの鎖がもとの非突然変異配列をコードし、そして２番目の鎖が所望の突然
変異を持つ。このヘテロ二本鎖ベクターを次いで大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）細胞のような適
切な細胞を形質転換またはトランスフェクトするために使用し、そして突然変異した配列
の配列を持つ組換えベクターを含むクローンを選択する。突然変異したオリゴヌクレオチ
ドを包含するクローンを濃縮するための遺伝子選択スキームは、Ｋｕｎｋｅｌ ｅｔ ａ
ｌ．（１９８７，Ｋｕｎｋｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１５
４：３６７−３８２）により考案された。あるいはＰＣＲ（商標）と市販されているＴａ
ｑポリメラーゼのような熱安定性酵素との使用を、増幅したＤＮＡフラグメントに突然変
異誘発性のオリゴヌクレオチドプライマーを包含させるために使用し、これは次いで適切
なクローニングまたは発現ベクターにクローン化することができる。Ｔｏｍｉｃ ｅｔ
ａｌ．（１９９０，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１２：１６５６）およびＵｐｅｎ
ｄｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９５，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１８：２９−３１）の
ＰＣＲ（商標）媒介突然変異誘発法の手順は、そのようなプロトコールの２例を提供する
。熱安定性ポリメラーゼに加えて熱安定性リガーゼを使用するＰＣＲ（商標）を使用して
、リン酸化された突然変異誘発性オリゴヌクレオチドを増幅したＤＮＡフラグメントに包
含させることもでき、これは次いで適当なクローニングまたは発現ベクターにクローン化
することができる。Ｍｉｃｈａｅｌ（１９９４，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，１６：４
１０−４１２）により記載された突然変異誘発法の手順は、そのようなプロトコールの１
例を提供する。

すべてのＡｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ配列がＮ−グリコシル化されていないことは、提
示されているモチーフの内容が重要であることを示唆している。別の取り組みでは、イン
ビボでグリコシル化され、そして活性、安定性またはペプチドの他の特性に対して有利で
ある新規なＮ−結合部位を同定するために、新規Ｎ−結合共通部位を有する突然変異ペプ
チドのライブラリーを作成する。

前に記載したように、糖タンパク質中にＮ−結合グリカン鎖を付加するための共通配列
はＡｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ（ここでＸは任意のアミノ酸であることができる）である
。Ａｓｎのカルボキシル末端側から２つの目のアミノ酸位をコードするヌクレオチド配列
は、当業者に知られている標準的な手順を使用してＳｅｒおよび／またはＴｈｒ残基をコ
ードするように突然変異させることができる。上記のように、すべてのＡｓｎ−Ｘ−Ｓｅ
ｒ／Ｔｈｒ部位がグリカンの付加により修飾されるわけではない。したがって各組換え突
然変異糖タンパク質は真菌、酵母または動物または哺乳動物発現系で発現され、そしてＮ
−結合グリカン鎖の付加に関して分析されなければならない。グリコシル化部位を特性決
定するための技術は当業者には周知である。さらに突然変異した組換え糖タンパク質の生
物学的機能は、調査する特定のタンパク質に関して標準的なアッセイを使用して決定する
ことができる。このようにペプチドの１次配列を操作し、そしてそれに含まれる新規なグ
リコシル化部位を同定し、そしてさらにペプチドの生物学的活性に及ぼす新規部位の効果
を決定することは簡単な問題となる。

別の態様では、Ｓｅｒ／Ｔｈｒ残基のアミノ末端側から２つ目のアミノ酸位をコードす
るヌクレオチド配列は、当業者に知られている標準的な手順を使用してＡｓｎをコードす
るように突然変異させることができる。新規なグリコシル化部位が作成されたかどうか、
およびこの部位がペプチドの生物学的活性に及ぼす効果を決定する手順は上に記載してい
る。
Ｂ．Ｏ−結合グリコシル化部位の作成または排除
ペプチドにＯ−結合グリコシル化部位を付加することは、ペプチドの始めの１次アミノ
酸配列に比べてペプチドの１次アミノ酸配列が１以上のさらなるＯ−結合グリコシル化部
位を含むように、ペプチドの１次アミノ酸配列を改変させることにより都合よく行う。ペ
プチドにＯ−結合グリコシル化部位を加えることは、ＯＨ基が接近可能となり、そしてＯ
−結合グリコシル化に利用できるようになるように、ペプチドの配列内に−ＯＨ基、好ま
しくはセリンまたはトレオニン残基を含んでなる１以上のアミノ酸種をペプチドに包含さ
せることにより行うこともできる。ペプチド内のＮ−結合グリコシル化部位の改変の検討
と同様に、ペプチドの１次アミノ酸配列は好ましくはヌクレオチドレベルで改変する。ペ
プチドをコードするＤＮＡ配列中の特別なヌクレオチドは、所望のアミノ酸が配列にコー
ドされるように改変することができる。ＤＮＡ中の突然変異（１つまたは複数）は好まし
くは、上記のホスホロアミダイト法のＤＮＡ合成および部位指向的突然変異誘発法の技術
のような当該技術分野で既知の方法を使用して作成される。

あるいはＯ−結合グリカンを付加する推定部位をコードするヌクレオチド配列はＤＮＡ
分子に、１または幾つかのコピーで分子の５'または３'末端に加えることができる。次
いで改変されたＤＮＡ配列を真菌、酵母または動物もしくは哺乳動物発現系の任意の１つ
で発現させ、そしてペプチドへの配列の付加およびこの配列が機能的なＯ−結合グリコシ
ル化部位であるか否かが分析される。簡単に説明すると合成ペプチドの受容体配列をヌク
レオチド分子の５'または３'末端に導入する。原理的には、この型の配列の付加は適当
な発現系で発現した時に生じる糖タンパク質に対して破壊性が低い。次いで改変したＤＮ
ＡはＣＨＯ細胞または他の適切な発現系で発現させ、そしてこれにより発現したタンパク
質をＯ−結合グリコシル化部位の存在について調査する。さらにグリカン鎖の存在または
不存在を決定することができる。

別の取り組みでは、新規なＯ−結合部位に有利な部位を、様々な新規Ｏ−結合部位を含
むペプチドのライブラリーを作成することによりペプチド中に見いだすことができる。例
えばＮ−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼによるＮ−アセチルガラクトサミ
ン付加のための共通アミノ酸配列は、使用する特異的なトランスフェラーゼに依存する。
ペプチドのアミノ酸配列を走査して、Ｏ−結合グリカン鎖の付加の可能性部位を生じるよ
うに突然変異させることができるアミノ酸の連続する基を同定することができる。これら
の突然変異はすでに記載したような当業者には知られている標準的手順を使用して生成す
ることができる。見いだされたグリコシル化部位が実際にグリコシル化されるかどうかを
決定するために、次に各組換え突然変異ペプチドを適当な発現系で発現させ、そして続い
てＯ−結合グリカン鎖の部位および／または存在の付加について分析する。
Ｃ．ペプチドの化学合成
本発明に有用なペプチドの１次構造は細胞に基づく発現系で最も効率的に生成され得る
が、ペプチドが合成的に生成できることも本発明の範囲内である。ペプチドの化学合成は
当該技術分野では周知であり、そして限定するわけてはないが段階的な固相合成、および
溶液中または固相上でのフラグメント縮合を含む。古典的な段階的固相合成には、所望の
ペプチド鎖のカルボキシ−末端アミノ酸に対応するアミノ酸を固体支持体に共有結合し、
そしてペプチド鎖を、活性化カルボキシル基を有する活性化アミノ酸誘導体の段階的カッ
プリングにより、アミノ末端に向けて延長することを含む。完全に保護された固相結合ペ
プチド鎖の集成体が完成した後、ペプチド−固相の共有結合を適当な化学により開裂し、
そして保護基を除去して生成物であるペプチドを得る。Ｒ．Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ、固相
ペプチド合成：テトラペプチドの合成（Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙ
ｎｔｈｅｓｉｓ：Ｔｈｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｔｅｔｒａｐｅｐｔｉｄｅ）、Ｊ
．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，８５：２１４９−２１５４（１９６３）を参照にされたい
。より長いペプチド鎖ほど、高純度の十分に規定された生成物を得ることが難しくなる。
複雑な混合物の生産のために、段階的な固相合成法にはサイズに限界がある。一般に１０
０の連続するアミノ酸残基またはそれ以上の十分に規定されたペプチドが、段階的な固相
合成を介して日常的に調製されることはない。

セグメント縮合法は、固相の段階的方法による数種のペプチドセグメントの調製、続い
て固相からの開裂、そしてこれら最大に保護されたセグメントの精製を含む。保護された
セグメントは固相に結合した最初のセグメントまで１つずつ縮合される。

本発明に有用なペプチドは、排他的固相合成、部分的固相法、フラグメント縮合または
古典的な溶液合成により合成することができる。これらの合成法は当業者には周知である
（例えばＭｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．８５：２１４９（１９６
３）、Ｓｔｅｗａｒｔ ｅｔ ａｌ．、「固相ペプチド合成（Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ
Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ）」（第２版）、（ピアスケミカル社、１９８４）
、Ｂａｙｅｒ ａｎｄ Ｒａｐｐ，Ｃｈｅｍ．Ｐｅｐｔ．Ｐｒｏｔ．３：３（１９８６）
、Ａｔｈｅｒｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，固相ペプチド合成：実践的とりくみ（Ｓｏｌｉｄ
Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒ
ｏａｃｈ（ＩＲＬ出版、１９８９）、Ｆｉｅｌｄｓ ａｎｄ Ｃｏｌｏｗｉｃｋ、「固相
ペプチド合成（Ｓｏｌｉｄ−Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ）」、Ｍ
ｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ 第２８９巻（アカデミック出版１９９７）
、およびＬｌｏｙｄ−Ｗｉｌｌｉａｍｓ ｅｔ ａｌ．、ペプチド合成の化学的取り組み
およびペプチド（Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ ｔｏ ｔｈｅ Ｓｙｎｔｈ
ｅｓｉｓ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ）（ＣＲＣ出版社、１９
９７）を参照にされたい）。「天然な化学的連結」および「発現したペプチドの連結」の
ような全化学合成法における変更も標準的である（例えばDawson et al., Science 266:
776 (1994), Hackeng et al., Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 94: 7845 (1997), Dawson,
Methods Enzymol. 287: 34 (1997), Muir et al, Proc. Nat'l Acad. Sci. USA 95: 67
05 (1998), and Severinov and Muir, J. Biol. Chem. 273: 16205 (1998))を参照にされ
たい）。また有用であるのは、カリフォルニア州、サウスサンフシンシスコのグリフォン
サイエンス（Ｇｒｙｐｈｏｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ）により開発された固相ペプチド合成法
である。米国特許第６，３２６，４６８号、同第６，２１７，８７３号、同第６，１７４
，５３０号および同第６，００１，３６４号明細書を参照にされたい（これらすべては全
部、引用により本明細書に編入する）。
Ｄ．翻訳後修飾
当業者はペプチドがＮ−結合および／またはＯ−結合グリカンを付加される上に、翻訳
後修飾も受け得ると考えるだろう。グリコシル化以外の翻訳後修飾を有するペプチドは、
ペプチドの所望する生物学的活性または機能を保持または改善するかぎり、本発明でペプ
チドとして使用できることを意図している。そのような翻訳後修飾は通常、インビボで起
こる天然な修飾、またはペプチドにインビトロで行われる操作された修飾であることがで
きる。意図する既知の修飾には限定するわけではないがアセチル化、アシル化、ＡＤＰ−
リボシル化、アミド化、フラビンの共有結合、ヘム部分の共有結合、ヌクレオチドまたは
ヌクレオチド誘導体の共有結合、脂質または脂質誘導体の共有結合、ホスファチジルイノ
シトールの共有結合、架橋結合、環化、ジスルフィド結合の形成、脱メチル化、共有架橋
結合の形成、システインの形成、ピログルタメートの形成、ホルミル化、ガンマカルボキ
シル化、グリコシル化、ＧＰＩアンカーの形成、ヒドロキシル化、ヨード化、メチル化、
ミリストイル化、酸化、タンパク質分解プロセッシング、リン酸化、プレニル化、ラセミ
化、セレノイル化、硫黄化、アルギニレーションのようなトランスファー−ＲＮＡが媒介
するアミノ酸のペプチドへの付加、およびユビキチン化を含む。多くのこれらの修飾を行
うために使用され得る酵素は当該技術分野では周知であり、そして中でもベーリンガーマ
ンハイム（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）（インディアナポリス、イリノイ
州）およびシグマケミカル社（セントルイス、モンタナ州）のような会社から市販されて
いる。

そのような修飾は当業者には周知であり、そして科学技術文献で大変詳細に記載されて
きた。幾つかの特に一般的な修飾、例えばグリコシル化、脂質結合、硫黄化、グルタミン
酸残基のガンマ−カルボキシル化、ヒドロキシル化およびＡＤＰ−リボシル化は、ペプチ
ド−構造および分子的特性（Ｐｅｐｔｉｄｅｓ−Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｍｏｌｅ
ｃｕｌａｒ Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ）、第２版、Ｔ．Ｅ．Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ、Ｗ．Ｈ．
Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ、ニューヨーク（１９９３）のようなほとんど
の基本的な教科書に記載されている。この主題については、Ｗｏｌｄ，Ｆ．、ペプチドの
翻訳後の共有的修飾（Ｐｏｓｔ−ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｖａｌｅｎｔ Ｍｏ
ｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ）、Ｂ．Ｃ．Ｊｏｈｎｓｏｎ編集、アカ
デミック出版、ニューヨーク、１−１２（１９８３）；Ｓｅｉｆｅｒ ｅｔ ａｌ．，（
Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１８２：６２６−６４６（１９９０））およびＲａｔｔａｎ
ｅｔ ａｌ．（Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．６６３：４８−６２（１９９２）
）によるような多くの詳細な総説が入手可能である。

ペプチドの共有的修飾も、選択した側鎖または末端アミノ酸残基と反応することができ
る有機誘導化剤を用いてペプチドの標的とするアミノ酸残基と反応させることにより、イ
ンビトロで分子に導入することもできる。最も一般的に誘導化される残基はシステイン、
ヒスチジン、リシン、アルギニン、チロシン、グルタミン、アスパラギンおよびアミノ末
端残基である。プロリンおよびリシンのヒドロキシル化、セリンおよびトレオニン残基の
ヒドロキシル基のリン酸化、リシン、ヒスチジンのアルファ−アミノ基およびヒスチジン
側鎖のメチル化、Ｎ−末端アミンのアセチル化およびＣ−末端カルボキシル基のアミド化
。そのような誘導化された部分は溶解性、吸収、生物学的半減期等を改善する。この部分
はまた、ペプチド等の望ましくない副作用も排除または弱めることができる。

さらに二官能性試薬での誘導化もペプチドを水不溶性支持体マトリックスまたは他の高
分子担体に架橋するために有用である。一般的に使用される架橋剤にはグルタルアルデヒ
ド、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル、ホモ二官能性イミドエステル、１，１−ビ
ス（−ジアゾロアセチル）−２−フェニルエタンおよび二官能性マレイミドを含む。メチ
ル−３−［９ｐ−アジドフェニル）］ジチオプロピオイミデートのような誘導化剤は、光
の存在下で架橋を形成することができる光活性化可能な中間体を生じる。あるいは臭化シ
アンで活性化した炭水化物および米国特許第３，９６９，２８７号および同第３，６９１
，０１６号明細書に記載されている反応性物質のような反応性の水不溶性マトリックスを
ペプチドの固定化に使用してもよい。
Ｅ．融合ペプチド／ペプチド
本発明に有用なペプチドは融合ペプチドを含んでなることができる。融合ペプチドは２
つのペプチドの生物学的および／または機能的特性が１つのペプチド分子内に組み合わさ
れることが望まれる場合、特に有利である。そのような融合ペプチドは、治療用および工
業的応用の新規かつ有用な分子を作成するために、天然には見いだされない生物学的活性
および機能の組み合わせを提示することができる。問題の生物学的活性には限定するわけ
ではないが酵素活性、レセプターおよび／またはリガンド活性、免疫原性モチーフおよび
構造的ドメインを含む。

そのような融合ペプチドは当該技術分野では周知であり、そして作成法は当業者には周
知である。例えばヒトα−インターフェロン−ヒト融合ペプチドがすでに作成され、ここ
で生成したペプチドはアルブミンの長期循環寿命と組合わされたα−インターフェロンの
治療的利益を有し、これにより減少した投与頻度、および患者に副作用の可能性が低下し
た治療用組成物が作られる。ヒトゲノムサイエンス（Ｈｕｍａｎ Ｇｅｎｏｍｅ Ｓｃｉ
ｅｎｃｅ）社からのＡｌｂｕｆｅｒｏｎ（商標）および米国特許第５，７６６，８８３号
明細書を参照にされたい。他の融合ペプチドには、本明細書のいたるところに記載する抗
体分子を含む。
Ｆ．より小さな「生物学的に活性な」分子の生成
本発明で使用するペプチドは天然なペプチドの変異体でよく、ここで天然なペプチドの
フラグメントが完全長の天然なペプチドの代わりに使用される。さらにプレ−プロ−およ
びプレ−ペプチドを企図する。変異体ペプチドは天然なペプチドよりもサイズが小さくて
もよく、そしてより大きなペプチドの１以上のドメインを含んでなってもよい。特別なペ
プチドドメインの選択は、ペプチド中の特定のドメインの生物学的活性が望まれるが、ペ
プチドの他のドメインの生物学的活性は望まない時に有利となり得る。またペプチドの所
望する治療的効果を強化することができるペプチドの短縮化および内部削除も含む。その
ような任意な形のペプチドは、ペプチドの所望する活性が保存される限り、本発明に有用
となることを意図している。

ペプチドのより短い変形物は天然なペプチドには見いだされない独自の利点を有するこ
とができる。ヒトのアルブミンの場合、天然なアルブミンペプチドのわずか６３％を含ん
でなる短縮化形態が、血漿容量増量剤として有利であることが分かった。短縮化アルブミ
ンペプチドは、天然なヒト血清アルブミンあるいは組換えヒト血清アルブミンの２分の１
から３分の２の個々のペプチド用量が均等なコロイド浸透効果（ｃｏｌｌｏｉｄ ｏｓｍ
ｏｔｉｃ ｅｆｆｅｃｔ）に必要とされるだけなので、治療目的のために天然なペプチド
よりも良いと考えられている。米国特許第５，３８０，７１２号明細書（この内容は全部
、引用により本明細書に編入する）を参照にされたい。

より小さい「生物学的に活性な」ペプチドも、天然なペプチドに比べて強化された治療
的活性を有することが見いだされた。ＩＬ−２の治療的効力は、血管漏出症候群により支
配される種々の副作用により制限される。全α−ヘリックスに対応する残基１〜３０から
成るより短く化学的に合成したペプチドの変形物は正しく折り畳まれ、そして天然なＩＬ
−２の生物学的的活性を副作用を伴うこと無しに含むことが分かった。
Ｇ．新規ペプチドの生成
本発明のペプチドは天然なペプチドの１次配列に由来するものでよく、または当業者に
知られている多くの手段を使用して工作することができる。そのように工作したペプチド
は、天然なペプチドに比べて強化された、または新規な特性から設計され、かつ／または
選択されることができる。例えばペプチドは、上昇した酵素反応速度、上昇したまたは低
下した基質もしくはリガンドへの結合親和性、上昇または低下したレセプターへの結合親
和性、基質、リガンド、レセプターまたは他の結合パートナーに対する改変された特異性
、上昇または低下したインビトロおよび／またはインビボの安定性、あるいは動物におい
て上昇または低下した免疫原性を有するように工作することができる。
Ｈ．突然変異
１．合理的な設計の突然変異
本発明の方法に有用なペプチドは、所望する生物学的活性または機能を強化し、ペプチ
ドの望ましくない特性を縮小し、かつ／またはペプチドに新規活性または機能を加えるた
めに突然変異させることができる。「合理的なペプチド設計」はそのような改変されたペ
プチドを生成するために使用することができる。いったんペプチドのアミノ酸配列および
構造を知り、そして所望する突然変異を計画すれば、突然変異は突然変異させることを望
むアミノ酸残基をコードする対応する核酸コドンに対して最も都合良く作成することがで
きる。当業者は一般的（ｕｎｉｖｅｒｓａｌ）な遺伝子コード、および選択した発現系で
のコドン優先性の知識に基づき、どのように核酸配列を改変すべきかを容易に決定するこ
とができる。コドン中の突然変異は翻訳中にペプチドに重合化されるアミノ酸残基を変化
させるために作ることができる。あるいはコドンは対応するコードされるアミノ酸残基は
同じであるが、コドンの選択が所望のペプチド発現系により適するように突然変異させる
ことができる。例えばシス−残基を別のアミノ酸に置き換えて成熟ペプチドからジスルフ
ィド結合を除去してもよく、触媒ドメインを突然変異させて生物学的活性を改変してもよ
く、そして一般にペプチドのアイソフォームを工作することができる。そのような突然変
異はとりわけ点突然変異、削除、挿入および短縮であることができる。

ペプチド中の特別なアミノ酸を突然変異させる技術は当該技術分野において周知である
。上で検討した部位指向的突然変異誘発法はコドンの指向的突然変異によく適している。
オリゴヌクレオチド−媒介突然変異誘発法もＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，（２００
１、モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃ
ｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、コールドスプリングハーバ
ーラボラトリー、ニューヨーク、１５．５１頁から始まる）により詳細に検討されている
。体系的な削除、挿入および短縮化は、当該技術分野で周知な他の方法の中でもリンカー
挿入突然変異誘発法、ヌクレアーゼＢａｌ３１での消化、およびリンカー走査（ｌｉｎｋ
ｅｒ−ｓｃａｎｎｉｎｇ）突然変異誘発法を使用して作成することができる（Ｓａｍｂｒ
ｏｏｋ ｅｔ ａｌ．、２００１、モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュ
アル、コールドスプリングハーバーラボラトリー、ニューヨーク）。

合理的なペプチドの設計は、熱不活性化および酸化に対する酵素の安定性を上げるため
に成功裏に使用されてきた。例えば酵素の安定性はα−アミラーゼ中のアスパラギン残基
の除去（Ｄｅｃｌｅｒｃｋ ｅｔ ａｌ．，２０００，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３０１：
１０４１−１０５７）、プロリンのようなより硬い構造的要素のα−アミラーゼ（Ｉｇａ
ｒａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｂｉｏｓｃｉ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｃ
ｈｅｍ．６３：１５３５−１５４０）およびＤ−キシロースイソメラーゼ（Ｚｈｕ ｅｔ
ａｌ．，１９９９，Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｅｎｇ．１２：６３５−６３８）への導入により
向上した。さらに疎水的接触の導入が３−イソプロピルマレートデヒドロゲナーゼ（Ａｋ
ａｎｕｍａ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２６０：４９９−
５０４）およびシュードモナス種（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）種から得たギ酸デヒドロゲ
ナーゼ（Ｒｏｊｋｏｖａ ｅｔ ａｌ．，１９９９，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．４４５：１８
３−１８８）を安定化した。これら突然変異の安定化効果の背後にあるメカニズムは、一
般に多くのペプチドに応用することができる。これらのおよび同様の突然変異は、本発明
の方法で改造されるペプチドに関して有用になると予想する。
２．ランダム変異導入（Ｒａｎｄｏｍ ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ）技術
本発明の方法に有用な新規ペプチドは、核酸のコード配列にランダムな突然変異を導入
する技術を使用して生成することができる。次いで核酸は望ましい発現系で発現され、そ
して生成したペプチドを問題の特性について評価する。ランダムな突然変異をＤＮＡ配列
に導入するための技術は当該技術分野では周知であり、そしてＰＣＲ突然変異誘発法、飽
和（ｓａｔｕｒａｔｉｏｎ）突然変異誘発法および縮重オリゴヌクレオチド法を含む。Ｓ
ａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ（２００１、モレキュラークローニング、ア
ラボラトリーアプローチ、コールドスプリングハーバー出版、コールドスプリングハーバ
ー、ニューヨーク州）およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（２００２、分子生物学の現
在の手法（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌ
ｏｇｙ）、ジョン ウィリー＆サンズ、ニューヨーク州）を参照にされたい。

ＰＣＲ突然変異誘発法では、低下したＴａｑポリメラーゼの忠実度を使用してランダム
な突然変異をＤＮＡのクローン化したフラグメントに導入する（Ｌｅｕｎｇ ｅｔ ａｌ
．，１９８９，Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ １：１１−１５）。これはランダムの突然変異をＤ
ＮＡ配列に導入する大変有力で、しかも比較的迅速な方法である。突然変異させるＤＮＡ
領域は、例えば改変したｄＧＴＰ／ｄＡＴＰ比を使用することにより、およびＭｎ^２＋を
ＰＣＲ反応に加えることにより、ＴａｑＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ合成の忠実度が
下がる条件下でポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を使用して増幅させる。増幅したＤＮＡ
フラグメントのプールは適切なクローニングベクターに挿入してランダムな突然変異ライ
ブラリーを提供する。

飽和突然変異誘発法は、多数の１塩基置換をクローン化したＤＮＡフラグメントに迅速
に導入することを可能とする（Ｍａｙｅｒｓ ｅｔ ａｌ．，１９８５，Ｓｃｉｅｎｃｅ
２２９：２４２）。この技術には例えばインビトロでの化学的処理または一本鎖ＤＮＡの
照射による突然変異の作成、そして相補的ＤＮＡ鎖の合成を含む。突然変異の頻度は処理
の厳しさを調節（ｍｏｄｕｌａｔｉｎｇ）することにより調節することができ、そして本
質的にすべての可能な塩基置換を得ることができる。この手順には突然変異フラグメント
に関する遺伝子選択が関与しないので、中性の置換ならびに機能を改変する置換の両方が
得られる。点突然変異の分布は保存された配列要素に片寄らない。

核酸相同体のライブラリーは、１組の縮重オリゴヌクレオチド配列から生成することも
できる。縮重オリゴヌクレオチド配列の化学的合成は、自動化ＤＮＡ合成器で行うことが
でき、そして合成遺伝子は次に適切な発現ベクターに連結することができる。縮重オリゴ
ヌクレオチドの合成は当該技術分野では知られている（例えばＮａｒａｎｇ，ＳＡ（１９
８３）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ３９：３；Ｉｔａｋｕｒａ ｅｔ ａｌ．（１９８１）組
換えＤＮＡ（Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡ）、Ｐｒｏｃ ３ｒｄ、クリーブランド
シンポ。高分子（Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）編集、ＡＧ ヴァルトン、アムステル
ダム：エルセビア（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ）２７３−２８９頁；Ｉｔａｋｕｒａ ｅｔ ａｌ
．（１９８４）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．５３：３２３；Ｉｔａｋｕｒａ ｅ
ｔ ａｌ．（１９８４）Ｓｃｉｅｎｃｅ１９８：１０５６；Ｉｋｅ ｅｔ ａｌ．（１９
８３）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１１：４７７を参照にされたい。そのよう
な技術は他のペプチドの方向性のある進化（ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ）に
も使用された（例えばＳｃｏｔｔ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ２４９：３
８６−３９０；Ｒｏｂｅｒｔｓ ｅｔ ａｌ．（１９９２）ＰＮＡＳ８９：２４２９−２
４３３；Ｄｅｖｌｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ２４９：４０４−４０
６；Ｃｗｉｒｌａ ｅｔ ａｌ．（１９９０）ＰＮＡＳ８７：６３７８−６３８２；なら
びに米国特許第５，２２３，４０９号、同第５，１９８，３４６号および同第５，０９６
，８１５号明細書を参照にされたい）。
ａ．方向付けされる進化（Ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ）
本発明の方法で有用なペプチドは、「方向付けされる進化」の技術を使用して生成する
こともできる。ペプチドの構造の知識を必要とする部位指向的突然変異誘発技術とは対照
的に、今ではペプチドの構造的特徴の知識無しで改善された特性を持つペプチドが得られ
る突然変異のライブラリーを作成する方法が存在する。これらの方法は一般に「方向付け
される進化」の技術として知られ、そして問題のペプチドをコードする核酸配列を循環的
（ｒｅｃｕｒｓｉｖｅ ｒｏｕｎｄ）な突然変異、スクリーニングそして増幅に供する点
でこれまでのランダムな変異誘導手順とは異なる。

幾つかの「方向付けされる進化」技術では、得られた核酸の多様性は核酸配列に点突然
変異をランダムに作成する突然変異法により生成される。点突然変異技術には限定するわ
けではないが、「誤−傾向（ｅｒｒｏｒ−ｐｒｏｎｅ）ＰＣＲ（商標）」（Ｃａｌｄｗｅ
ｌｌ ａｎｄ Ｊｏｙｃｅ，１９９４：ＰＣＲ Ｍｅｔｈｏｄｓ Ａｐｐｌ．２：２８−
３３；およびＫｅ ａｎｄ Ｍａｄｉｓｏｎ，１９９７，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ
Ｒｅｓ．２：３３７１−３３７２）、反復オリゴヌクレオチド−指向的突然変異誘発法（
ｒｅｐｅａｔｅｄ ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ−ｄｉｒｅｃｔｅｄ ｍｕｔａｇｅ
ｎｅｓｉｓ）（Ｒｅｉｄｈａａｒ−Ｏｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，１９９１，Ｍｅｔｈｏｄ
ｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ，２０８：５６４−５８６）、および前記の任意なランダム変異導入
法を含む。

方向付けされる進化が作用し得る多様性を作成する別の方法は、突然変異誘発遺伝子の
使用である。問題の核酸を、ゲノムが典型的には欠損性ＤＮＡ修復遺伝子をコードする突
然変異誘発細胞株の中で培養する（米国特許第６，３６５，４１０号明細書、Ｓｅｌｉｆ
ｏｎｏｖａ ｅｔ ａｌ．，２００１，Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ
．６７：３６４５−３６４９；Ｌｏｎｇ−ＭｃＧｉｅ ｅｔ ａｌ．，２０００，Ｂｉｏ
ｔｅｃｈ．Ｂｉｏｅｎｇ．６８：１２１−１２５；ジェネンコール インターナショナル
社（Ｇｅｎｅｎｃｏｒ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｃ．）、パロアルト、カリフ
ォルニア州を参照にされたい）。

方向付けされる進化の技術を使用して多様性を達成することは、縮重プライマーと一緒
に飽和突然変異誘発法を使用しても行うことができる（Ｇｅｎｅ Ｓｉｔｅ Ｓａｔｕｒ
ａｔｉｏｎ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ（商標）、ディバーサ社（Ｄｉｖｅｒｓａ Ｃｏｒ
ｐ）、サンディエゴ、カリフォルニア州）。この種の飽和突然変異誘発法では、多様化さ
れるべき核酸配列長を覆うように設計された縮重プライマーを使用して、ＰＣＲ反応でポ
リメラーゼをプライムする。この様式では、アミノ酸のコード配列の各コドンを突然変異
させて、残りは一般的な各１９個のアミノ酸をコードするようにする。この技術は核酸コ
ード配列の特別な領域に突然変異、削除および挿入を導入するためにも使用できると同時
に、残りの核酸分子を手付かずにしておく。遺伝子飽和技術に関する手順は当該技術分野
では周知であり、そして米国特許第６，１７１，８２０号明細書に見いだすことができる
。
ｂ．ＤＮＡシャフリング（ｓｈｕｆｆｌｉｎｇ）
本発明の方法に有用な新規ペプチドは、遺伝子−シャフリング、モチーフ−シャフリン
グ、エキソン−シャフリングおよび／またはコドン−シャフリング（集合的に「ＤＮＡシ
ャフリング」と呼ぶ）を使用して生成することもできる。ＤＮＡシャフリング技術は本発
明に有用なペプチドの活性をモジュレートするために使用することができ、そして改変し
た活性を有するペプチドを生成するために使用することができる。一般に米国特許第５，
６０５，７９３号；同第５，８１１，２３８号；同第５，８３０，７２１号；同第５，８
３４，２５２号；および同第５，８３７，４５８号明細書、およびStemmer et al. (1994
, Nature 370(6488):389-391); Crameri et al. (1998, Nature 391 (6664): 288-291);
Zhang et al. (1997, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94(9): 4504-4509); Stemmer et al.
(1994, Proc. Natl. Acad. Sci USA 91 (22): 10747-10751), Patten et al. (1997, Cu
rr. Opinion Biotechnol. 8: 724-33); Harayama, (1998, Trends Biotechnol. 16(2): 7
6-82); Hansson, et al., (1999, J. Mol. Biol. 287:265-76); and Lorenzo and Blasco
(1998, Biotec hniques 24(2): 308-13)
を参照にされたい（これら各々は、引用により本明細書に編入する）。

ＤＮＡシャフリングにはポリヌクレオチド配列に変化を生じるために、２以上のＤＮＡ
セグメントの相同的または部位特異的組換えを集合することが関与する。ＤＮＡシャフリ
ングはヒト免疫不全ウイルス１型タンパク質（Ｐｅｋｒｕｎ ｅｔ ａｌ．２００２，Ｊ
．Ｖｉｒｏｌ．７６（６）：２９２４−３５）、トリアジンヒドロラーゼ（Ｒａｉｌｌａ
ｒｄ ｅｔ ａｌ．２００１，Ｃｈｅｍ Ｂｉｏｌ８（９）：８９１−８９８）、マウス
白血病ウイルス（ＭＬＶ）タンパク質（Ｐｏｗｅｌｌ ｅｔ ａｌ．２０００，Ｎａｔ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ １８（１２）：１２７９−１２８２）、およびインドールグリセ
ロールホスフェートシンターゼ（Ｍｅｒｚ ｅｔ ａｌ．２０００，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓ
ｔｒｙ ３９（５）：８８０−８８９）の新規変化を生成するために使用されて来た。

ＤＮＡシャフリングの技術は、ＤＮＡのインビトロ相同的組換えを可能にすることによ
り天然な組換えを模することによる生体分子の多様性を作成するために開発された（Ｓｔ
ｅｍｍｌｅｒ，１９９４，Ｎａｔｕｒｅ ３７０：３８９−３９１；およびＳｔｅｍｍｌ
ｅｒ，１９９４，ＰＮＡＳ ９１：１０７４７−１０７５１）。一般にこの方法では関連
する遺伝子群を断片化し、そして変性の循環サイクル、再ハイブリダイゼーション、そし
て続いてＴａｑポリメラーゼによる５'突出部の延長に供する。各サイクルでフラグメン
トの長さが増し、そしてＤＮＡ組換えは異なる遺伝子に由来するフラグメントが互いにハ
イブリダイズする時に起こる。ＤＮＡの最初の断片化は通常、ヌクレアーゼ消化、典型的
にはＤＮａｓｅを使用して達成されるが（Ｓｔｅｍｍｌｅｒの参考文献、同上を参照にさ
れたい）、切断（ｉｎｔｅｒｒｕｐｔｅｄ）ＰＣＲ合成により行うこともできる（米国特
許第５．９６５，４０８号明細書、引用により全部、本明細書に編入する；ディバース社
、サンディエゴ、カリフォルニア州を参照にされたい）。ＤＮＡシャフリング法は各回の
シャフリングにより、生成される有利な突然変異の指向的な組換えが達成され、したがっ
てペプチドの改善された表現型について自己選択がある点で、ランダムな点突然変異法よ
りも有利である。

ＤＮＡシャフリングの技術は当該技術分野では周知である。そのような技術の詳細な説
明は、Ｓｔｅｍｍｌｅｒ，１９９４，Ｎａｔｕｒｅ ３７０：３８９−３９１およびＳｔ
ｅｍｍｌｅｒ，１９９４，ＰＮＡＳ ９１：１０７４７−１０７５１に見いだされる。Ｄ
ＮＡシャフリング技術は米国特許第６，１８０，４０６号、同第６，１６５，７９３号、
同第６，１３２，９７０号、同第６，１１７，６７９号、同第６，０９６，５４８号、同
第５，８３７，４５８号、同第５，８３４，２５２号、同第５，８３０，７２１号、同第
５，８１１，２３８号および同第５，６０５，７９３号明細書にも記載されている（これ
らはすべて引用により全部、本明細書に編入する）。

この技術はまた、さらに最近ではＤＮＡシャフリングの基本的技術の変法も提供する。
１例では、エキソンシャフリングでペプチドの特別なドメインをコードするエキソンまた
はエキソンの組み合わせがキメラオリゴヌクレオチドを使用して増幅される。増幅された
分子は次いで自己−プライミングアッセンブリー（ｓｅｌｆ−ｐｒｉｍｉｎｇ ＰＣＲ
ａｓｓｅｍｂｌｙ）により組換えられる（Ｋｏｌｋｍａｎ ａｎｄ Ｓｔｅｍｍｌｅｒ，
２００１，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１９：４２３−４２８）。別の例では一過性の鋳型
ライブラリー構築に関するランダムなキメラ誘発法（ｒａｎｄｏｍ ｃｈｉｍｅｒａｇｅ
ｎｅｓｉｓ：ＲＡＣＨＩＴＴ）の技術を使用して、１本鎖の元のＤＮＡフラグメントを完
全長の１本鎖の鋳型にアニーリングする（Ｃｏｃｏ ｅｔ ａｌ．，２００１，Ｎａｔ．
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１９：３５４−３５９）。さらに別の例では、付着伸長法（ｓｔ
ａｇｇｅｒｅｄ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｐｒｏｃｅｓｓ：ＳｔＥＰ）、大変省略されたア
ニーリング／延長サイクルでの熱サイクリングを使用して、フランキングプライマーから
ＤＮＡ重合を反復して切断する（Ｚｈａｏ ｅｔ ａｌ．，１９９８，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔ
ｅｃｈｎｏｌ．１６：２５８−２６１）。ＣＬＥＲＹとして知られている技術では、酵母
を対象としてインビトロのファミリーシャフリングをインビボの相同的組換えと組み合わ
せる（Ａｂｅｃａｓｓｉｓ ｅｔ ａｌ．，２０００，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒ
ｅｓ．２８：Ｅ８８；）。遺伝子間組換えを最大にするために、各核酸の相補鎖からの１
本鎖ＤＮＡをＤＮａｓｅで消化し、そしてアニーリングする（Ｋｉｋｕｃｈｉ ｅｔ ａ
ｌ．，２０００，Ｇｅｎｅ ２４３：１３３−１３７）。次いで開裂可能な配列により連
結されている可変長の２つの短縮化核酸の平滑末端を連結して、相同的組換え無しに遺伝
子融合を生成する（Ｓｉｅｂｅｒ ｅｔ ａｌ．，２００１，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎ
ｏｌ．１９：４５６−４６０；Ｌｕｔｚ ｅｔ ａｌ．，２００１，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａ
ｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２９：Ｅ１６；Ｏｓｔｅｒｍｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｎ
ａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１７：１２０５−１２０９；Ｌｕｔｚ ａｎｄ Ｂｅｎｋ
ｏｖｉｃ，２０００，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１１：３１９−３２
４）。小さい配列相同性を持つ核酸間の組換えは一般に、ＤＮＡフラグメントのエキソヌ
クレアーゼが媒介する平滑末端化、そしてフラグメントを一緒に連結してそれらを組換え
ることによっても強化された（米国特許第６，３６１，９７４号明細書、引用により全部
、本明細書に編入する）。本発明は本発明の方法に有用なペプチドおよび／または酵素の
生物学的特性を強化する手段として、上記の各々、およびすべての変異の使用を意図する
。

方向性のある進化および遺伝子シャフリング技術を詳細に記載する公開されたプロトコ
ールに加えて、今では選択したペプチドの遺伝子シャフリングおよび選択手順を請け負う
商業的サービスも利用することができる。マキシジェン（Ｍａｘｙｇｅｎ：レッドウッド
シティ、カリフォルニア州）は、カスタムＤＮＡシャフリングライブラリーを作成するた
めの商業的サービスを提供する。さらにこの会社は、遺伝子シャフリングおよび選択する
ペプチドファミリーの選択を含むカスタマイズされた方向付けされる進化の手順も行う。

オプティジェニックス社（Ｏｐｔｉｇｅｎｉｘ Ｉｎｃ．、ニューアーク、デラウエア
州）、プラスミドシャフリングに関連したサービスを提供する。オプティジェニックスは
新たな特性を有する突然変異をその中に得るために、遺伝子ファミリーを使用する。問題
の核酸をアスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）発現系中のプラスミドにクローン化
する。次いで関連するファミリーのＤＮＡを発現系に導入し、そしてファミリーの保存さ
れた領域中の組換えが宿主中で起こる。次いで生成した突然変異ＤＮＡが発現し、そして
それらから生産されたペプチドを、所望の特性の存在および望ましくない特性の不存在に
ついてスクリーニングする。
ｃ．スクリーニング手順
「進化」の各循環後、突然変異した遺伝子により発現された所望のペプチドを問題の特
性についてスクリーニングする。次いで「候補」遺伝子を増幅し、そして次回のＤＮＡシ
ャフリング用にプールする。使用するスクリーニング手順は、「進化」したペプチドおよ
び問題の特性に高度に依存する。中でもとりわけペプチド安定性、生物学的活性、抗原性
のような特性は、当該技術分野で周知な手順を使用して選択することができる。本発明の
方法に有用な好適ペプチドの生物学的活性に関する個々のアッセイは、本明細書のいたる
ところに記載する。
ｄ．技術の組み合わせ
当業者には突然変異および選択の上記技術は、本発明の方法に有用な最高に可能なペプ
チド分子を生成するために、互いに、そしてさらなる手順と組み合わせることができると
考えるだろう。すなわち本発明はペプチドの生成に関して任意の１つの方法に限定される
ことはなく、そして本明細書に記載するありとあらゆる方法論を包含すると解釈すべきで
ある。例えば点突然変異を核酸配列に導入する手順を最初に行い、続いて循環的ＤＮＡシ
ャフリング、選択および増幅を行うことができる。初期の点突然変異の導入を使用して、
それを欠く遺伝子群に多様性を導入し、次回のＤＮＡのシャフリングおよびスクリーニン
グにより有利な点突然変異を選択し、そして組み合わせることができる。
ＩＩＩ．グリコシダーゼおよびグリコトランスフェラーゼ
Ａ．グリコシダーゼ
グリコシダーゼは受容体分子として水を使用し、そしてそのままで典型的なグリコシド
−加水分解酵素であるグリコシルトランスフェラーゼである。グリコシダーゼは、反応混
合物の熱力学または動力学を制御することによりインビトロでグリコシド結合を形成する
ために使用することができる。変更された反応条件でも、グリコシダーゼ反応はうまく作
用することが難しく、そしてグリコシダーゼは可逆的なトランスグリコシラーゼ反応およ
び競合する加水分解反応の結果、低い合成収量を与える傾向がある。

グリコシダーゼは加水分解中に破壊される結合で立体化学を維持することにより、ある
いは加水分解中に破壊される結合で立体化学を逆転することにより機能することができ、
それぞれ「維持（ｒｅｔａｉｎｉｎｇ）」グリコシダーゼまたは「逆転（ｉｎｖｅｒｔｉ
ｎｇ）」グリコシダーゼのいずれかに分類される。維持グリコシダーゼは活性部位に存在
する２つの重要なカルボン酸部分を有し、１つのカルボキシレートは酸／塩基触媒として
作用し、そしてもう１つは求核性として作用するが、逆転グリコシダーゼは１つのカルボ
ン酸が酸として、そしてもう１つが塩基として作用する。

任意のグリコシダーゼの活性および結合特性を決定する方法は当該技術分野では周知で
あり、それらには簡略化ＨＰＬＣプロトコール（Ｊａｃｏｂ ａｎｄ Ｓｃｕｄｄｅｒ，
１９９４，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌ．２３０：２８０−３００）を含む。
グリコシダーゼおよびグリコシダーゼ処理の一般的考察は、糖生物学、実践的取り組み（
Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ）、（１９９３
，Ｆｕｋｕｄａ ａｎｄ Ｋｏｂａｔａ編集、オックスフォード大学出版社、ニューヨー
ク）に見いだせる。

本発明に有用なグリコシダーゼには限定するわけではないが、シアリダーゼ、ガラクト
シダーゼ、エンドグリカナーゼ、マンノシダーゼ（すなわちαおよびβ、ＭａｎＩ、Ｍａ
ｎＩＩおよびＭａｎＩＩＩ）、キシロシダーゼ、フコシダーゼ、アグロバクテリウム種（
Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐ．）のβ−グリコシダーゼ、セルロモナス フィミ（
Ｃｅｌｌｕｌｏｍｏｎａｓ ｆｉｍｉ）のマンノシダーゼ２Ａ、フミコーラ インソレン
ス（Ｈｕｍｉｃｏｌａ ｉｎｓｏｌｅｎｓ）のグリコシダーゼ、スルホロブス ソルファ
タリカス（Ｓｕｌｆｏｌｏｂｕｓ ｓｏｌｆａｔａｒｉｃｕｓ）のグリコシダーゼおよび
バチルス リケニホルミス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ）のグリコ
シダーゼを含む。

本発明で使用するフコシダーゼの選択はフコースの他の分子に対する結合に依存する。
本発明の方法に有用な多くのα−フコシダーゼの特異性は当該技術分野では周知であり、
そしてまた多種のフコシダーゼが市販されている（とりわけグリコ（Ｇｌｙｋｏ）、ノバ
ト、カリフォルニア州；プロザイム（ＰＲＯｚｙｍｅ）、サンレアンドロ、カリフォルニ
ア州；カルビオケム−ノババイオケム（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ−Ｎｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ
）社、サンディエゴ、カリフォルニア州）。興味深いα−フコシダーゼには限定するわけ
ではないが、タルボ コルナタス（Ｔｕｒｂｏ ｃｏｒｎｕｔｕｓ）、カロニア ランパ
ス（Ｃｈａｒｏｎｉａ ｌａｍｐａｓ）、バチルス フルミナンス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ｆｕｌｍｉｎａｎｓ）、アスペルギルス ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ
）、クロストリジウム パーフリンゲンス（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｐｅｒｆｒｉｎｇ
ｅｎｓ）、ウシ腎臓（グリコ）、ニワトリ肝臓（Ｔｙａｇａｒａｊａｎ ｅｔ ａｌ．，
１９９６，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ ６：８３−９３）に由来するα−フコシダーゼ、
およびザントモナス マニホティス（Ｘａｎｔｈｏｍｏｎａｓ ｍａｎｉｈｏｔｉｓ）（
グリコ、プロザイム）由来のα−フコシダーゼＩＩを含む。ニワトリ肝臓のフコシダーゼ
はＮ−結合グリカンからコアフコースの除去に特に有用である。
Ｂ．グリコシルトランスフェラーゼ
グリコシルトランスフェラーゼは活性化糖（供与体ＮＤＰ−糖）のタンパク質、糖ペプ
チド、脂質または糖脂質への、あるいは成長しているオリゴ糖の非還元末端への付加を段
階的様式で触媒する。Ｎ−結合糖ペプチドは、トランスフェラーゼおよび脂質−結合オリ
ゴ糖供与体Ｄｏｌ−ＰＰ−ＮＡＧ_２Ｇｌｃ_３Ｍａｎ_９をｅｎブロック転移で、続いてコア
の改作を介して合成される。この場合、「コア」サッカリドの性質は後の結合とは幾分異
なる。大変多数のグリコシルトランスフェラーゼが当該技術分野で知られている。

本発明で使用するグリコシルトランスフェラーゼは、それが糖供与体として修飾された
糖を利用できる限り任意のものでよい。そのような酵素の例はガラクトシルトランスフェ
ラーゼ、Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルガラクトサミニ
ルトランスフェラーゼ、フコシルトランスフェラーゼ、シアリルトランスフェラーゼ、マ
ンノシルトランスフェラーゼ、キシロシルトランスフェラーゼ、グルクロノニルトランス
フェラーゼ等のようなルロアール経路のグリコシルトランスフェラーゼを含む。

グリコシルトランスフェラーゼ反応に関与する酵素的サッカリド合成については、グリ
コシルトランスフェラーゼをクローン化することができ、あるいは任意の供給源から単離
することができる。多くのクローン化グリコシルトランスフェラーゼ、およびそれらのポ
リヌクレオチド配列も知られている。例えばＴａｎｉｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．，２００
２，グリコシルトランスフェラーゼおよび関連遺伝子のハンドブック（Ｈａｎｄｂｏｏｋ
ｏｆ ｇｌｙｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅｓ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎ
ｅｓ）、スプリンガー、東京、を参照にされたい。

グリコシルトランスフェラーゼのアミノ酸配列、およびアミノ酸配列を推定することが
できるグリコシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列も、ＧｅｎＢａｎｋ
、Ｓｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ、ＥＭＢＬおよびその他を含む様々な公開されているデーターベ
ースに見いだすことができる。

本発明の方法で採用できるグリコシルトランスフェラーゼには、限定するわけではない
がガラクトシルトランスフェラーゼ、フコシルトランスフェラーゼ、グルコシルトランス
フェラーゼ、Ｎ−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコサ
ミニルトランスフェラーゼ、グルクロニルトランスフェラーゼ、シアリルトランスフェラ
ーゼ、マンノシルトランスフェラーゼ、グルクロン酸トランスフェラーゼ、ガラクツロン
酸トランスフェラーゼおよびオリゴ糖トランスフェラーゼを含む。適当なグリコシルトラ
ンスフェラーゼには真核生物ならびに原核生物から得られるものを含む。

グリコシルトランスフェラーゼをコードするＤＮＡは化学合成により、適切な細胞また
は細胞系カルチャーに由来するｍＲＮＡの逆転写物をスクリーニングすることにより、適
切な細胞に由来するゲノムライブラリーをスクリーニングすることにより、あるいはこれ
らの手法の組み合わせにより得ることができる。ｍＲＮＡまたはゲノムＤＮＡのスクリー
ニングは、グリコシルトランスフェラーゼの核酸配列から生成したオリゴヌクレオチドプ
ローブを使用して行うことができる。プローブは限定するわけではないが蛍光基、放射性
原子または化学発光基のような検出可能な標識で既知の手順に従い標識し、そして通例の
ハイブリダイゼーションアッセイで使用することができる。あるいはグリコシルトランス
フェラーゼの核酸配列から生成されるＰＣＲオリゴヌクレオチドプライマーを用いて、グ
リコシルトランスフェラーゼの核酸配列をポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）手法を使用し
て得ることができる。Ｍｕｌｌｉｓ ｅｔ ａｌ．に対する米国特許第４，６８３，１９
５号明細書およびＭｕｌｌｉｓに対する米国特許第４，６８３，２０２号明細書を参照に
されたい。

グリコシルトランスフェラーゼ酵素は、グリコシルトランスフェラーゼ酵素をコードす
るＤＮＡを含むベクターで形質転換した宿主細胞で合成することができる。ベクターは複
製可能なＤＮＡ構築物である。ベクターはグリコシルトランスフェラーゼ酵素をコードす
るＤＮＡを増幅し、かつ／またはグリコシルトランスフェラーゼ酵素をコードするＤＮＡ
を発現させるいずれかのために使用する。発現ベクターは複製可能なＤＮＡ構築物であり
、ここでグリコシルトランスフェラーゼ酵素をコードするＤＮＡ配列が、適切な宿主中で
グリコシルトランスフェラーゼ酵素の発現を行うことができる適切な制御配列に操作可能
に連結されている。そのような制御配列の必要性は選択した宿主および選択した形質転換
法に依存して変動する。一般に制御配列には転写プロモーター、転写を制御する任意のオ
ペレーター配列、適当なｍＲＮＡリボゾーム結合部位をコードする配列、および転写およ
び翻訳の終結を制御する配列を含む。増幅ベクターは発現制御ドメインを必要としない。
必要なすべてのものは、通常は複製起点により付与される宿主中で複製する能力、および
形質転換体の認識を容易にするための遺伝子の選択である。
１．フコシルトランスフェラーゼ
幾つかの態様では、本発明の方法で使用するグリコシルトランスフェラーゼは、フコシ
ルトランスフェラーゼである。フコシルトランスフェラーゼは当業者に知られている。フ
コシルトランスフェラーゼの例には、Ｌ−フコースをＧＤＰ−フコースから受容体の糖の
ヒドロキシ部位へ転移する酵素を含む。非−ヌクレオチド糖から受容体へ転移するフコシ
ルトランスフェラーゼも本発明で使用される。

幾つかの態様では、受容体の糖が例えばオリゴ糖のグリコシド中のＧａｌβ（１→３，
４）ＧｌｃＮＡｃβ−基のＧｌｃＮＡｃである。この反応に適当なフコシルトランスフェ
ラーゼには、最初にヒトの乳から特性決定されたＧａｌβ（１→３，４）ＧｌｃＮＡｃβ
１−α（１→３，４）フコシルトランスフェラーゼ（ＦＴＩＩＩ Ｅ．Ｃ．Ｎｏ．２．４
．１．６５）、（Ｐａｌｃｉｃ ｅｔ ａｌ．，Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｒｅｓ．１
９０：１−１１（１９８９）；Ｐｒｉｅｅｌｓ，ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ
．２５６：１０４５６−１０４６３（１９８１）；およびＮｕｎｅｚ，ｅｔ ａｌ．，Ｃ
ａｎ．Ｊ．Ｃｈｅｍ．５９：２０８６−２０９５（１９８１）を参照にされたい）、およ
びヒトの血清で見いだされたＧａｌβ（１→４）ＧｌｃＮＡｃβ−αフコシルトランスフ
ェラーゼ（ＦＴＩＶ、ＦＴＶ、ＦＴＶＩ）を含む。ＦＴＶＩＩ（Ｅ．Ｃ．Ｎｏ．２．４．
１．６５）、シアリルα（２→３）Ｇａｌβ（１→３）ＧｌｃＮＡｃβフコシルトランス
フェラーゼも特性決定された。Ｇａｌβ（１→３，４）ＧｌｃＮＡｃβ−α（１→３，４
）フコシルトランスフェラーゼの組換え形も特性決定された（Ｄｕｍａｓ，ｅｔ ａｌ．
，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｌｅｔｔｅｒｓ １：４２５−４２８（１９９１）およびＫｕ
ｋｏｗｓｋａ−Ｌａｔａｌｌｏ，ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅｓ ａｎｄ Ｄｅｖｅｌｏｐｍ
ｅｎｔ ４：１２８８−１３０３（１９９０）を参照にされたい）。他のフコシルトラン
スフェラーゼの例には例えば、α１，２フコシルトランスフェラーゼ（Ｅ．Ｃ．Ｎｏ．２
．４．１．６９）を含む。酵素的フコシル化はＭｏｌｌｉｃｏｎｅ ｅｔ ａｌ．，Ｅｕ
ｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９１：１６９−１７６（１９９０）または米国特許第５，３
７４，６５５号明細書に記載されている方法により行うことができる。
２．ガラクトシルトランスフェラーゼ
別の態様群では、グリコシルトランスフェラーゼはガラクトシルトランスフェラーゼで
ある。ガラクトシルトランスフェラーゼの例にはα（１，３）ガラクトシルトランスフェ
ラーゼ（Ｅ．Ｃ．Ｎｏ．２．４．１．１５１、Ｄａｂｋｏｗｓｋｉ ｅｔ ａｌ．，Ｔｒ
ａｎｓｐｌａｎｔ Ｐｒｏｃ．２５：２９２１（１９９３）およびＹａｍａｍｏｔｏ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３４５：２２９−２３３（１９９０）を参照にされたい）、ウ
シ（ＧｅｎＢａｎｋ ｊ０４９８９、Ｊｏｚｉａｓｓｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．
Ｃｈｅｍ．２６４：１４２９０−１４２９７（１９８９））、マウス（ＧｅｎＢａｎｋ
ｍ２６９２５；Ｌａｒｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ'ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ
．ＵＳＡ ８６：８２２７−８２３１（１９８９）、ブタ（ＧｅｎＢａｎｋ Ｌ３６１５
２；Ｓｔｒａｈａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ４１：１０１−１
０５（１９９５）を含む。別の適当なα１，３ガラクトシルトランスフェラーゼは、血液
のＢ抗原群の合成に関与するものである（Ｅ．Ｃ．２．４．１．３７、Ｙａｍａｍｏｔｏ
ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：１１４６−１１５１（１９９０）（
ヒト））。

また本発明の方法での使用に適するのはβ（１，４）ガラクトシルトランスフェラーゼ
であり、これには例えばＥＣ２．４．１．９０（ＬａｃＮＡｃシンテターゼ）およびＥＣ
２．４．１．２２（ラクトースシンテターゼ）、ウシ（Ｄ'Ａｇｏｓｔａｒｏ ｅｔ ａ
ｌ．，Ｅｕｒ，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１８３：２１１−２１７（１９８９））、ヒト（Ｍ
ａｓｒｉ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１
５７：６５７−６６３（１９８８））、マウス（Ｎａｋａｚａｗａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．
Ｂｉｏｃｈｅｍ．１０４：１６５−１６８（１９８８））、ならびにＥＣ．２．４．１．
３８およびセラミド ガラクトシルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．４．１．４５、Ｓｔａ
ｈｌ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｒｅｓ．３８：２３４−２４２（１９９４
））を含む。他の適当なガラクトシルトランスフェラーゼには例えば、α１，２ガラクト
シルトランスフェラーゼ（例えばシゾサッカロミセス ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈ
ａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）に由来、Ｃｈａｐｅｌｌ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｂｉ
ｏｌ．Ｃｅｌｌ ５：５１９−５２８（１９９４）を参照にされたい）を含む。さらに適
当なグリコシルトランスフェラーゼについては、Ｔａｎｉｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．（２
００２、グリコシルトランスフェラーゼおよび関連遺伝子のハンドブック、プリンガー、
東京）、Ｇｕｏ ｅｔ ａｌ．（２００１，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，１１（１０）：
８１３−８２０）およびＢｒｅｔｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９９８，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．
１２３：１０００−１００９）を参照にされたい。

遺伝子操作によりクローン化した遺伝子に由来する酵素ＧａｌＮＡｃ Ｔ_{Ｉ−ＸＩＶ}の
ようなタンパク質の生産も周知である。例えば米国特許第４，７６１，３７１号明細書を
参照にされたい。１つの方法は十分なサンプルの収集、次いで酵素のアミノ酸配列をＮ−
末端シークエンシングにより決定することを含む。次いでこの情報を使用して完全長の（
膜に結合した）トランスフェラーゼをコードするｃＤＮＡクローンを単離し、これは昆虫
細胞系Ｓｆ９中で発現して完全に活性な酵素の合成をもたらす。次いで酵素の受容体特異
性を、１６種のタンパク質における既知のグリコシル化部位の周辺のアミノ酸の半定量的
分析、続いて合成ペプチドのインビトロのグリコシル化の実験により決定する。この作業
では特定のアミノ酸残基がグリコシル化ペプチドセグメント中で過剰に提示され（ｏｖｅ
ｒｒｐｒｅｓｅｎｔｅｄ）、そしてグリコシル化されたセリンおよびトレオニン残基周辺
の特異的位置の残基が、受容体効率に他のアミノ酸部分よりも顕著な効果を有し得ること
が示された。
３．シアリルトランスフェラーゼ
シアリルトランスフェラーゼは、組換え細胞および本発明の反応混合物に有用な別の種
類のグリコシルトランスフェラーゼである。本発明の使用に適するシアリルトランスフェ
ラーゼの例には、ＳＴ３ＧａｌＩＩＩ（例えばラットまたはヒトＳＴ３ＧａｌＩＩＩ）、
ＳＴ３ＧａｌＩＶ、ＳＴ３ＧａｌＩ、ＳＴ６ＧａｌＩ、ＳＴ３ＧａｌＶ、ＳＴ６ＧａｌＩ
Ｉ、ＳＴ６ＧａｌＮＡｃＩ、ＳＴ６ＧａｌＮＡｃＩＩおよびＳＴ６ＧａｌＮＡｃＩＩＩを
含む（本明細書で使用するシアリルトランスフェラーゼの命名法は、Ｔｓｕｊｉ ｅｔ
ａｌ．，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，６：ｖ−ｘｉｖ（１９９６）に記載されている）。
α（２，３）シアリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．４．９９．６）と呼ぶα（２，３）
シアリルトランスフェラーゼの例は、シアル酸をＧａｌβ１→３Ｇｌｃ二糖またはグリコ
シドの非還元末端のＧａｌへ転移する。Ｖａｎ ｄｅｎ Ｅｉｊｎｄｅｎ ｅｔ ａｌ．
，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５６：３１５９（１９８１）、Ｗｅｉｎｓｔｅｉｎ ｅｔ
ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５７：１３８４５（１９８２）およびＷｅｎ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：２１０１１（１９９２）を参照にされた
い。別の例のα２，３シアリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．４．９９．４）は、シアル
酸を二糖またはグリコシドの非還元末端のＧａｌへ転移する。Ｒｅａｒｉｃｋ ｅｔ ａ
ｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５４：４４４４（１９７９）およびＧｉｌｌｅｓｐｉ
ｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：２１００４（１９９２）を参照に
されたい。さらなる酵素の例にはＧａｌ−β−１，４−ＧｌｃＮＡｃα−２，６−シアリ
ルトランスフェラーゼを含む（Ｋｕｒｏｓａｗａ ｅｔ ａｌ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈ
ｅｍ．２１９：３７５−３８１（１９９４）を参照にされたい）。

好ましくは糖ペプチドの炭水化物のグリコシル化について、シアリルトランスフェラー
ゼは完全にシアリル化された炭水化物構造上の末端シアル酸の下にある最も多くの終わり
から２番目の配列である配列Ｇａｌβ１，４ＧｌｃＮＡｃ−、Ｇａｌβ１，３ＧｌｃＮＡ
ｃ−またはＧａｌβ１，３ＧａｌＮＡｃ−にシアル酸を転移させることができる（表７を
参照にされたい）。２，８−シアリルトランスフェラーゼは、シアル酸を本発明の方法に
有用なα２，３Ｇａｌβ１，４ＧｌｃＮＡｃに転移させることができる。

特許請求する方法に有用なシアリルトランスフェラーゼの例は、ＳＴ３ＧａｌＩＩＩで
あり、これはα（２，３）シアリルトランスフェラーゼ（ＥＣ２．４．９９．６）とも呼
ばれる。この酵素はシアル酸をＧａｌβ１，３ＧｌｃＮＡｃまたはＧａｌβ１，４Ｇｌｃ
ＮＡｃグリコシドのＧａｌへ転移させることを触媒し（例えばＷｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ
．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：２１０１１（１９９２）；Ｖａｎ ｄｅｎ Ｅｉｊｎｄ
ｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５６：３１５９（１９９１）を参照に
されたい）、そして糖ペプチド中のアスパラギン−結合オリゴ糖のシアリル化の原因であ
る。シアル酸はＧａｌと結合して２つのサッカリド間にα−結合を形成する。サッカリド
間の結合（連結）は、ＮｅｕＡｃの２−位とＧａｌの３−位との間である。この特別な酵
素はラットの肝臓（Ｗｅｉｎｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５
７：１３８４５（１９８２））；ヒトｃＤＮＡ（Ｓａｓａｋｉ ｅｔ ａｌ．（１９９３
）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：２２７８２−２２７８７；Ｋｉｔａｇａｗａ ＆
Ｐａｕｌｓｏｎ（１９９４）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：１３９４−１４０１）、
およびゲノム（Ｋｉｔａｇａｗａ ｅｔ ａｌ．（１９９６）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．
２７１：９３１−９３８）から単離することができる。ＤＮＡ配列も既知であり、組換え
発現によるこの酵素の生産を促進する。好適な態様では、特許請求するシアリル化法はラ
ットのＳＴ３ＧａｌＩＩＩを使用する。

本発明に使用する他のシアリルトランスフェラーゼの例には、α（２，３）を含むカン
ピロバクター ジェジュニ（Ｃａｍｐｈｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ）から単離さ
れるものを含む。例えば国際公開第９９／４９０５１号パンフレットを参照にされたい。

表７に掲げるものも含む他のシアリルトランスフェラーゼも、工業的に重要な糖ペプチ
ドの経済的かつ効率的な大規模シアリル化法に有用である。このような他の酵素の有用性
を見いだすための単純な試験として、様々な量の酵素（１〜１００ｍＵ／ｍｇタンパク質
）をアシアロ−α_１ＡＧＰ（１〜１０ｍｇ／ｍｌで）と反応させて、糖ペプチドをシアリ
ル化する問題のシアリルトランスフェラーゼの能力を、ウシのＳＴ６Ｇａｌ、ＳＴ３Ｇａ
ｌＩＩＩまたは両シアリルトランスフェラーゼのいずれかと比較する。あるいは他の糖ペ
プチドまたは糖ペプチド、またはペプチド骨格から酵素的に放出されるＮ−結合オリゴ糖
を、この評価のためにアシアロ−α_１ＡＧＰの代わりに使用することができる。ＳＴ６Ｇ
ａｌＩよりも効率的に糖ペプチドのＮ−結合オリゴ糖をシアリル化する能力を持つシアリ
ルトランスフェラーゼは、ペプチドをシアリル化するための現実的な大規模法に有用であ
る（本開示においてＳＴ３ＧａｌＩＩＩについて具体的に説明するように）。
４．他のグリコシルトランスフェラーゼ
当業者は他のグリコシルトランスフェラーゼを、シアリルトランスフェラーゼについて
詳細に記載したように同様なトランスフェラーゼサイクルで置き換え得ることができると
理解するだろう。特にグリコシルトランスフェラーゼは例えばグルコシルトランスフェラ
ーゼ、例えばＡｌｇ８（Ｓｔａｇｌｊｏｖ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａ
ｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：５９７７（１９９４））またはＡｌｇ５（Ｈｅｅｓｅｎ ｅ
ｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２２４：７１（１９９４））であることもで
きる。

Ｎ−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼも本発明の実施に使用する。適当な
Ｎ−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼには限定するわけではないが、α（１
，３）Ｎ−アセチルガラクトサミニルトランスフェラーゼ、β（１，４）Ｎ−アセチルガ
ラクトサミニルトランスフェラーゼ（Ｎａｇａｔａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈ
ｅｍ．２６７：１２０８２−１２０８９（１９９２）およびＳｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，
Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：１５１６２（１９９４））およびペプチドＮ−アセチ
ルガラクトサミニルトランスフェラーゼ（Ｈｏｍａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈ
ｅｍ．２６８：１２６０９（１９９３））を含む。適当なＮ−アセチルグルコサミニルト
ランスフェラーゼにはＧｎＴＩ（２．４．１．１０１、Ｈｕｌｌ ｅｔ ａｌ．，ＢＢＲ
Ｃ１７６：６０８（１９９１））、ＧｎＴＩＩ、ＧｎＴＩＩＩ（Ｉｈａｒａ ｅｔ ａｌ
．，Ｊ．ＢｉｏＣｈｅｍ．１１３：６９２（１９９３））、ＧｎＴＩＶ、ＧｎＴＶ（Ｓｈ
ｏｒｅｉｂａｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：１５３８１（１９９
３））およびＧｎＴＶＩ、Ｏ−結合Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ（Ｂ
ｉｅｒｈｕｉｚｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８
９：９３２６（１９９２））、Ｎ−アセチルグルコサミン−１−ホスフェートトランスフ
ェラーゼ（Ｒａｊｐｕｔ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．２８５：９８５（１９９
２））およびヒアルロナン シンターゼを含む。

マンノシルトランスフェラーゼは、修飾されたマンノース部分を転移するために使用す
る。適当なマンノシルトランスフェラーゼにはα（１，２）マンノシルトランスフェラー
ゼ、α（１，３）マンノシルトランスフェラーゼ、α（１，６）マンノシルトランスフェ
ラーゼ、β（１，４）マンノシルトランスフェラーゼ、Ｄｏｌ−Ｐ−Ｍａｎシンターゼ、
ＯＣｈ１およびＰｍｔ１を含む（Ｋｏｒｎｆｅｌｄｓ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ
．Ｂｉｏｃｈｅｍ．５４：６３１−６６４（１９８５）を参照にされたい）。

キシロシルトランスフェラーゼも本発明に有用である。例えばＲｏｄｇｅｒｓ，ｅｔ
ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ．２８８：８１７−８２２（１９９２）；およびＥｌｂａｉ
ｎ，ｅｔ ａｌ．、米国特許第６，１６８，９３７号明細書を参照にされたい。

他の適当なグリコシルトランスフェラーゼサイクルは、Ｉｃｈｉｋａｗａ ｅｔ ａｌ
．，ＪＡＣＳ１１４：９２８３（１９９２）、Ｗｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃ
ｈｅｍ．５７：４３４３（１９９２）およびＩｃｈｉｋａｗａ ｅｔ ａｌ．、炭水化物
および炭水化物ポリマー（ＣＡＲＢＯＨＹＤＲＡＴＥＳ ＡＮＤ ＣＡＲＢＯＨＹＤＲＡ
ＴＥ ＰＯＬＹＭＥＲＳ）、Ｙａｌｔａｍｉ編集（ＡＴＬ出版、１９９３）に記載されて
いる。

原核生物のグリコシルトランスフェラーゼも本発明の実施に有用である。そのようなグ
リコシルトランスフェラーゼには多くのグラム陰性細菌により生産されるリポオリゴ糖（
ＬＯＳ）の合成に関与する酵素を含む。ＬＯＳは典型的には、ヒト上皮細胞の表面または
宿主の分泌に見いだされる複合糖質を模する末端グリカン配列を有する（Ｐｒｅｓｔｏｎ
ｅｔ ａｌ．、Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ
２３（３）：１３９−１８０（１９９６））。そのような酵素には限定するわけではない
が、β１，６ガラクトシルトランスフェラーゼおよびβ１，３ガラクトシルトランスフェ
ラーゼを含む大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）およびネズミチフス菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔ
ｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）のような種のｒｆａオペロンのタンパク質（例えばＥＭＢＬ寄託
番号Ｍ８０５９９およびＭ８６９３５（大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ））；ＥＭＢＬ寄託番号Ｓ
５６３６１（ネズミチフス菌（Ｓ．ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）を参照にされたい）、グル
コシルトランスフェラーゼ（スイス−プロット寄託番号Ｐ２５７４０（大腸菌（Ｅ．ｃｏ
ｌｉ））、β１，２−グルコシルトランスフェラーゼ（ｒｆａＪ）（スイス−プロット寄
託番号Ｐ２７１２９（大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ））およびスイス−プロット寄託番号Ｐ１９
８１７（ネズミチフス菌（Ｓ．ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ））、およびβ１，２−Ｎ−アセ
チルグルコサミニルトランスフェラーゼ（ｒｆａＫ）（ＥＭＢＬ寄託番号Ｕ０００３９（
大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ））を含む。アミノ酸配列が既知の他のグリコシルトランスフェラ
ーゼには、肺炎桿菌（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、大腸菌（Ｅ．ｃ
ｏｌｉ）、ネズミチフス菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）、サルモ
ネラ エンテリカ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｅｎｔｅｒｉｃａ）、腸炎エルシニア（Ｙｅ
ｒｓｉｎｉａ ｅｎｔｅｒｏｃｏｌｉｔｉｃａ）、マイコバクテリウム レプロサム（Ｍ
ｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｐｒｏｓｕｍ）のような微生物で特徴付けられたｒｆａ
Ｂのようなオペロン、および緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）
のｒｈ１オペロンにコードされるものを含む。

また本発明での使用に適するのは、ラクト−Ｎ−ネオテトラオース、Ｄ−ガラクトシル
−β−１，４−Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミニル−β−１，３−Ｄ−ガラクトシル−β
−１，４−Ｄ−グルコース、およびＰ^ｋ血液型の三糖配列、Ｄ−ガラクトシル−α−１，
４−Ｄ−ガラクトシル−β−１，４−Ｄ−グルコースを含む構造の生産に関与するグリコ
シルトランスフェラーゼであり、これらは粘膜病原菌である淋菌（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ
ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ）および髄膜炎菌（Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）のＬＯＳで
同定された（Ｓｃｈｏｌｔｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４１
：２３６−２４３（１９９４））。グリコシルトランスフェラーゼをコードする髄膜炎菌
（Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）および淋菌（Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ）由来の遺
伝子は、髄膜炎菌（Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）のイムノタイプＬ３およびＬ１（Ｊ
ｅｎｎｉｎｇｓ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１８：７２９−７４０（
１９９５））、および淋菌（Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ）突然変異体のＦ６２（Ｇｏｔ
ｓｈｌｉｃｈ，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１８０：２１８１−２１９０（１９９４））から同
定されたこれらの構造の生合成に関与した。髄膜炎菌（Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）
では、３つの遺伝子、ｌｇｔＡ、ｌｇｔＢおよびｌｇＥからなる位置がラクト−Ｎ−ネオ
テトラオース鎖に最後の３つの糖を付加するために必要であるグリコシルトランスフェラ
ーゼ酵素をコードする（Ｗａｋａｒｃｈｕｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．
２７１：１９１６６−７３（１９９６））。最近、ｌｇｔＢおよびｌｇｔＡ遺伝子産物の
酵素活性が証明され、それらの提案されたグリコシルトランスフェラーゼ機能について直
接的な証拠が提供された（Ｗａｋａｒｃｈｕｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ
．２７１（４５）：２８２７１−２７６（１９９６））。淋菌（Ｎ．ｇｏｎｏｒｒｈｏｅ
ａｅ）では２つのさらなる遺伝子、β−Ｄ−ＧａｌＮＡｃをラクト−Ｎ−ネオテトラオー
ス構造の末端ガラクトースの３位に加えるｌｇｔＤ、および短縮化ＬＯＳのラクトース要
素に末端α−Ｇａｌを加えるｌｇｔＣがあり、これによりＰ^ｋ血液型抗原構造を作成する
（Ｇｏｔｓｈｌｉｃｈ（１９９４）、同上）。髄膜炎菌（Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ
）では、別のイムノタイプＬ１もＰ^ｋ血液型抗原を発現し、そしてｌｇｔＣ遺伝子を持つ
ことが示された（Ｊｅｎｎｉｎｇｓ ｅｔ ａｌ．，（１９９５）、同上）。ナイセリア
（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）のグリコシルトランスフェラーゼおよび関連遺伝子も、米国特許
第５，５４５，５５３号明細書（Ｇｏｔｓｃｈｌｉｃｈ）に記載されている。ヘリコバク
ター ピロリ（Ｈｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ ｐｙｌｏｒｉ）に由来するα１，２−フコシ
ルトランスフェラーゼおよびα１，３−フコシルトランスフェラーゼに関する遺伝子も特
性決定された（Ｍａｒｔｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：２１３
４９−２１３５６（１９９７））。また本発明で使用するのはカンピロバクター ジェジ
ュニ（Ｃａｍｐｈｙｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ）のグリコシルトランスフェラーゼ
である（Ｔａｎｉｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．，２００２、グリコシルトランスフェラーゼ
および関連遺伝子のハンドブック、スプリンガー、東京を参照にされたい）。
Ｂ．スルホトランスフェラーゼ
本発明は、例えばヘパリン、硫酸ヘパラン、カラゲニン（ｃａｒｒａｇｅｎｅｎ）のよ
うな硫黄化多糖および関連化合物を含む硫黄化した分子を含むペプチドの生産法を提供す
る。適当なスルホトランスフェラーゼには例えば、コンドロイチン−６−スルホトランス
フェラーゼ（Ｆｕｋｕｔａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０：１８５７
５−１８５８０（１９９５）により記載されたニワトリｃＤＮＡ；ＧｅｎＢａｎｋ寄託番
号Ｄ４９９１５）、グルコサミノグリカンＮ−アセチルグルコサミンＮ−デアセチラーゼ
／Ｎ−スルホトランスフェラーゼ１（Ｄｉｘｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ２
６：２３９−２４１（１９９５）；ＵＬ１８９１８）、およびグルコサミノグリカンＮ−
アセチルグルコサミンＮ−デアセチラーゼ／Ｎ−スルホトランスフェラーゼ２（Ｏｒｅｌ
ｌａｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：２２７０−２２７６（１９
９４）およびＥｒｉｋｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：１０
４３８−１０４４３（１９９４）に記載されたマウスｃＤＮＡ；ＧｅｎＢａｎｋ寄託番号
Ｕ２３０４に記載されたヒトｃＤＮＡ）を含む。
Ｃ．細胞−結合グリコシルトランスフェラーゼ
別の態様では、本発明の方法で採用する酵素は細胞−結合グリコシルトランスフェラー
ゼである。多くの可溶性グリコシルトランスフェラーゼが知られているが（例えば米国特
許第５，０３２，５１９号明細書を参照にされたい）、グリコシルトランスフェラーゼは
細胞に付随する時は一般に膜に結合している状態である。これまでに研究された多くの膜
に結合酵素は内在性のタンパク質であると考えられ；すなわちそれらは超音波により膜か
ら放出されず、そして可溶化に界面活性剤を要する。表面のグリコシルトランスフェラー
ゼは脊椎動物および無脊椎動物の細胞上の表面で同定され、そしてこれら表面のトランス
フェラーゼが生理学的条件下で触媒活性を維持していることも認識された。しかし細胞表
面のグリコシルトランスフェラーゼのより認識されている機能は細胞間の認識である（Ｒ
ｏｔｈ，１９９０，超細胞現象に対する分子的取り組み（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ａｐｐｒ
ｏａｃｈｅｓ ｔｏ Ｓｕｐｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｐｈｅｎｏｍｅｎａ）。

細胞により発現されるグリコシルトランスフェラーゼを改変させるための方法が開発さ
れた。例えばＬａｒｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ
ＳＡ８６：８２２７−８２３１（１９８９）は、細胞表面のオリゴ糖構造およびそれらの
コグネイトグルコシルトランスフェラーゼの発現を決定するクローン化ｃＤＮＡ配列を単
離する遺伝的取り組みを報告する。ＵＤＰ−ガラクトース；β−Ｄ−ガラクトシル−１，
４−Ｎ−アセチル−Ｄ−グルコサミニドα−１，３−ガラクトシルトランスフェラーゼを
を発現することが知られているマウスの細胞系から単離したｍＲＮＡから作成したｃＤＮ
ＡライブラリーをＣＯＳ−１細胞にトランスフェクトした。次いでトランスフェクトした
細胞を培養し、そしてα１，３−ガラクトシルトランスフェラーゼ活性についてアッセイ
した。

Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
８９：２７１３−２７１７（１９９２）は、β−ラクタマーゼを大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉ
ｃｈｉａ ｃｏｌｉ）の外面に足掛けする（ａｎｃｈｏｒｉｎｇ）方法を開示する。（ｉ
）外膜タンパク質のシグナル配列、（ｉｉ）外膜タンパク質の膜−拡張区分（ｓｐａｎｎ
ｉｎｇ ｓｅｃｔｉｏｎ）、および（ｉｉｉ）完全な成熟β−ラクタマーゼ配列からなる
三者（ｔｒｉｐａｒｔｉｔｅ）融合が生産され、活性な表面結合β−ラクタマーゼ分子を
生じる。しかしＦｒａｎｃｉｓｃｏの方法は原核細胞系にのみ限定され、著者により認識
されているように、正しく機能するには完全な三者融合を必要とする。
Ｄ．融合酵素
別の例示態様では、本発明の方法は所望の糖ペプチド結合物の合成に関与する１より多
くの酵素活性を有する融合ペプチドを利用する。融合ペプチドは例えば、アクセサリー酵
素の触媒的に活性なドメインに連結されたグリコシルトランスフェラーゼの触媒的に活性
なドメインからなることができる。アクセサリー酵素の触媒ドメインは、例えばグリコシ
ルトランスフェラーゼの供与体であるヌクレオチド糖の形成における工程を触媒するか、
あるいはグリコシルトランスフェラーゼサイクルに関与する反応を触媒することができる
。例えばグリコシルトランスフェラーゼをコードするポリヌクレオチドはフレイム内で、
ヌクレオチド糖合成に関与する酵素をコードするポリヌクレオチドに結合され得る。生成
した融合ペプチドは次いでヌクレオチド糖合成を触媒するだけでなく、アクセプター分子
への糖部分の転移も触媒する。融合ペプチドは１つの発現可能なヌクレオチド配列に連結
された２以上のサイクル酵素であることができる。別の態様では融合ペプチドは２以上の
グリコシルトランスフェラーゼの触媒的に活性なドメインを含む。例えば米国特許５，６
４１，６６８第号明細書を参照にされたい。本発明の修飾された糖ペプチドは、様々な適
切な融合ペプチドを利用して容易に設計し、そして製造することができる（例えば国際公
開第９９／３１２２４号パンフレットとして１９９９年６月２４日に公開されたＰＣＴ特
許出願ＰＣＴ／ＣＡ９８／０１１８０を参照にされたい）。
Ｅ．固定化酵素
細胞に結合した酵素に加えて、本発明は固体および／または可溶性支持体上に固定化さ
れた酵素の使用も提供する。例示態様では、本発明の方法に従い完全なグリコシルリンカ
ーを介してＰＥＧに結合されたグリコシルトランスフェラーゼを提供する。ＰＥＧ−リン
カー−酵素結合物は、場合により固体支持体に結合される。本発明の方法において固体に
支持された酵素の使用は、反応混合物の処理および反応生成物の精製を簡単にし、そして
また酵素の容易な回収を可能とする。このグリコシルトランスフェラーゼ結合物は本発明
の方法に利用する。他の酵素および支持体の組み合わせも当業者には明らかであろう。
Ｆ．グリコシルトランスフェラーゼの突然変異誘発法
本発明の方法で使用するグリコシルトランスフェラーゼ、シアリルトランスフェラーゼ
、スルホトランスフェラーゼおよび任意の他の酵素の新規形態は、これまでに記載した任
意の方法ならびに当該技術分野で周知の他の方法を使用して作成することができる。特に
興味深いのは、改変された受容体特異性および／または供与体特異性を持つトランスフェ
ラーゼである。また興味深いのは、中でもより高い転換速度およびより高い安定性を持つ
酵素である。

合理的な設計の突然変異誘発技術は、ペプチドの配列が知られている時に使用すること
ができる。本発明で使用するトランスフェラーゼおよびグルコシダーゼ配列ならびに３次
構造の多くは知られているので、これらの酵素は突然変異の合理的な設計に理想的である
。例えば酵素の触媒部位を突然変異させて酵素の供与体および／または受容体特異性を改
変することができる。

グリコシルトランスフェラーゼおよびグリコシダーゼヒドロラーゼに関する膨大な３次
構造に関するデータにより、これらの酵素はドメイン交換が関与する突然変異にも理想的
なものとなる。グリコシルトランスフェラーゼおよびグリコシダーゼヒドロラーゼはモジ
ュラー酵素（ｍｏｄｕｌａｒ ｅｎｚｙｍｅ）である（Ｂｏｕｒｎｅ ａｎｄ Ｈｅｎｒ
ｉｓｓａｔ，２００１，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ
Ｂｉｏｌｏｇｙ １１：５９３−６００）。グリコシルトランスフェラーゼはそれらの
構造に基づき２つのファミリーに分類される：ＧＴ−ＡおよびＧＴ−Ｂ。ＧＴ−Ａファミ
リーのグリコシルトランスフェラーゼは２つの似ていないドメインを含んでなり、１つは
ヌクレオチド結合に関与し、そしてもう１つは受容体結合に関与する。このように１つの
遺伝子に由来するドメインをコードするＤＮＡ配列を、第２の遺伝子に由来するドメイン
とフレイム内で都合よく融合して、新たな受容体／供与体特異性を持つタンパク質をコー
ドする新たな遺伝子を作成することができる。そのようなドメインの交換にはさらに炭水
化物モジュールおよび他のアクセサリードメインを含むことができる。

上記のようなランダム変異導入および／または方向性のある進化の技術は、本発明で使
用するグリコシルトランスフェラーゼおよびグリコシダーゼの新規な形態を作成するため
にも使用することができる。
ＩＶ．インビトロおよびインビボの発現系
Ａ．糖ペプチドを生産するための細胞
グリコシルトランスフェラーゼの作用はペプチドのグリコシル化に重要であり、すなわ
ち所定の細胞型での１組のグリコシルトランスフェラーゼの発現における差異は、その細
胞で生産される所定のペプチドのグリコシル化パターンに影響を及ぼす。宿主細胞に依存
的なペプチドのグリコシル化の総説に関しては、Ｋａｂａｔａ ａｎｄ Ｔａｋａｓａｋ
ｉ、「細胞表面の炭水化物の構造および生合成（Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｂｉｏｓ
ｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ Ｃｅｌｌ Ｓｕｒｆａｃｅ Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅｓ）」
、細胞表面の炭水化物および細胞生育（Ｃｅｌｌ Ｓｕｒｆａｃｅ Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ
ａｔｅｓ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ）で、１９９１、第１〜２４頁、
編集．Ｍｉｎｏｒｕ Ｆｕｋｕｄａ、ＣＲＣ出版、ボカ ラトン、フロリダ州を参照にさ
れたい。

本開示に従いペプチドが生産される細胞の型は、所望のグリコシル化を有するペプチド
を生成するために必要な改造の程度に対してのみ関係がある。例えば所望のグリコシル化
を有するペプチドを生成するために、インビトロで必要な酵素的消化反応の回数および順
序および酵素的合成反応の回数および順序は、特定の細胞型により生産されるペプチド上
のグリカンの構造に依存して変動する。本発明は本明細書に開示する任意の細胞型を含む
任意の１つの特定の細胞型に由来するペプチドの生産に限定されるとは全く解釈されるべ
きではなく、本発明の威力およびペプチドが生成される細胞系の独立性を確立する幾つか
の細胞系の検討をこれから提示する。

一般に、そしてペプチドをコードする核酸からペプチドを発現させるために、核酸はプ
ロモーター要素、ターミネーター要素およびこの２つの間に操作可能に連結されたペプチ
ドのコード配列を含んでなる発現カセットに包含されなければならない。次いで発現カセ
ットをベクターに操作可能に連結する。この末端に向けてアダプターまたはリンカーを使
用してヌクレオチドフラグメントを連結することができ、あるいは便利な制限部位、余分
なヌクレオチドの除去、制限部位の除去等を提供するために他の操作が関与してもよい。
このために、インビトロの突然変異誘発法、プライマー修復、制限、アニーリング、再置
換、例えばトランジッションおよびトランスバージョンを含むことができる。シャトルベ
クターは細胞中で複製に必要な遺伝子要素を有する。ベクターの中には原核細胞中でのみ
複製できるもの、あるいは原核および真核細胞の両方で複製できるものがある。そのよう
なプラスミド発現ベクターは１以上の複製系、好ましくは発現の目的で酵母宿主細胞内で
、そしてクローニングの目的で原核宿主内で安定に維持されることができる２つの複製系
で維持される。今では多様な特性を持つ多くのベクターが市販されている。ベクターは通
常、プラスミドまたはファージであるが、コスミドまたはミニ−染色体でもよい。都合が
良いことに、多くの市販されているベクターはすでに存在する発現カセットにプロモータ
ーおよびターミネーター、および問題のペプチド用のコード配列を挿入できるマルチ−リ
ンカー部位を有する。次いで発現カセットを含むシャトルベクターは大腸菌（Ｅ．ｃｏｌ
ｉ）中で形質転換され、ここでベクターは細胞分裂中に複製して選択した発現系の宿主細
胞を形質転換するのに十分なベクターの調製物を生成する。上記の方法は当業者には周知
であり、そして行なわれるプロトコールはＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（２００１，
モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバー
ラボラトリー、ニューヨーク）に見いだすことができる。

ベクターはいったん増幅された細胞から精製されれば、次に発現系の細胞に形質転換さ
れる。形質転換のプルトコールは細胞の種類およびベクターの性質に依存する。形質転換
体を適当な栄養培地中で成長させ、そして適当な場合には内因性ＤＮＡの維持を選択圧下
で維持する。発現が誘導性である場合、成長により酵母宿主が高密度の細胞を生じること
ができるようになり、次いで発現が誘導される。分泌した成熟したヘテロロガスなペプチ
ドは通常の手段により回収することができ、そしてクロマトグラフィー、電気泳動、透析
、溶媒−溶媒抽出等により精製され得る。

分子クローニングの技術は当該技術分野では周知である。さらに分子クローニングの手
順に関する技術は、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（２００１、モレキュラークローニ
ング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバーラボラトリー出版、コ
ールドスプリングハーバー、ニューヨーク州）；Ｇｌｏｖｅｒ ｅｔ ａｌ．，（１９８
５、ＤＮＡクローニング：実践的取り組み（ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｐｒａｃｔｉ
ｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ）、第ＩおよびＩＩ巻）；Ｇａｉｔ ｅｔ ａｌ．，（１９８
５、オリゴヌクレオチド合成（Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ）
）；Ｈａｍｅｓ ａｎｄ Ｈｉｇｇｉｎｓ（１９８５、核酸ハイブリダイゼーション（Ｎ
ｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ））；Ｈａｍｅｓ ａｎｄ Ｈｉ
ｇｇｉｎｓ（１９８４、転写および翻訳（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒａ
ｎｓｌａｔｉｏｎ））；Ｆｒｅｓｈｎｅｙ ｅｔ ａｌ．，（１９８６、動物細胞培養（
Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ））；Ｐｅｒｂｅｌ、（１９８６、固定化細胞
および酵素（Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ Ｃｅｌｌｓ Ａｎｄ Ｅｎｚｙｍｅｓ）、ＩＲＬ
出版）；Ｐｅｒｂｅｌ、（１９８４、分子クローニングに関する実践的指針（Ａ Ｐｒａ
ｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ Ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ））；Ａｕｓｕ
ｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（２００２、分子生物学の現在のプロトコール（Ｃｕｒｒｅｎｔ
Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ）、ジョン ウィリー
＆サンズ社）に見いだすことができる。
Ｂ．真菌および酵母
酵母で生産されたペプチドはグリコシル化されており、そしてそこに存在するグリカン
構造は主に高マンノース構造である。Ｎ−グリカンの場合では、酵母で生産されたグリカ
ン構造は、９以上ものマンノース残基を含むことができ、この残基はそれに結合したさら
なる糖を含んでも、含まなくてもよい。酵母細胞により生産されるペプチド上のこの型の
グリカンの例を、図５の左側に示す。マンノース残基の番号およびそれに結合したさらな
る糖の型および複雑さに関係なく、酵母細胞で生産されたペプチドの成分としてＮ−グリ
カンは、図５に示すトリマンノシルコア構造を含んでなる。酵母細胞で生産されたペプチ
ド上のグリカン構造が高マンノース構造である時、当業者が利用可能なマンノシダーゼ酵
素を使用してグリカンのトリマンノシルコアを含んでなる残基を除き、分子からすべての
マンノース残基をインビトロで除去することは単純なことであり、これにより結合した基
本的なトリマンノシルコア構造を有するペプチドを生成する。ここで今、当該技術分野で
利用可能な技術を使用し、そして本開示から着手すれば、インビトロで酵素的にさらなる
糖部分を基本的なトリマンノシルコア構造に加え、所望のグリカン構造をトリマンノシル
コアに結合して有するペプチドを生成することは簡単である。同様に酵母細胞により生産
されたペプチドが、結合した他の複雑な糖に加えて高マンノース構造を含んでなる時、余
分なマンノース残基を含めさらなる糖のすべてを酵素的に開裂して基本的なトリマンノシ
ルコア構造に到達することは簡単な事柄である。いったん基本的なトリマンノシルコアが
生成されれば、所望のグリコシル化を有するペプチドの生成は本明細書に提供する指針に
従い可能となる。

「酵母」は無胞子酵母（Ｅｎｄｏｍｙｃｅｔａｌｅｓ）、担子胞子酵母（ｂａｓｉｄｉ
ｏｓｐｏｒｏｇｅｎｏｕｓ）、および不完全菌類（Ｂｌａｓｔｏｍｙｃｅｔｅｓ）に属す
る酵母を意図している。無胞子酵母は２つのファミリー、スペルモフィトラ科（Ｓｐｅｒ
ｍｏｐｈｔｈｏｒａｃｅａｅ）およびサッカロミセス科（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｔａ
ｃｅａｅ）に分類される。後者は４つのサブファミリー、シゾサッカロミセス科（Ｓｃｈ
ｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｏｉｄｅａｅ）（例えばシゾサッカロミセス（Ｓｃｈｉｚ
ｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属）、ナドゾニア科（Ｎａｄｓｏｎｉｏｉｄｅａｅ）、
リポミセス科（Ｌｉｐｏｍｙｃｏｉｄｅａｅ）およびサッカロミセス科（Ｓａｃｃｈａｒ
ｏｍｙｃｏｉｄｅａｅ）（例えばピヒア（Ｐｉｃｈｉａ）、クルイベロミセス（Ｋｌｕｙ
ｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）、およびサッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属）から
なる。担子胞子酵母にはロイコスポリジウム（Ｌｅｕｃｏｓｐｏｒｉｄｉｕｍ）、ロドス
ポリジウム（Ｒｈｏｄｏｓｐｏｒｉｄｉｕｍ）、スポリディオボルス（Ｓｐｏｒｉｄｉｏ
ｂｏｌｕｓ）、フィロバシジウム（Ｆｉｌｏｂａｓｉｄｉｕｍ）およびフィロバシジーラ
（Ｆｉｌｏｂａｓｉｄｉｅｌｌａ）属を含む。不完全菌類に属する酵母は２つのファミリ
ー、スポロボロミセス科（Ｓｐｏｒｏｂｏｌｏｍｙｃｅｔａｃｅａｅ）（例えば、スポロ
ボロミセス（Ｓｐｏｒｏｂｏｌｏｍｙｃｅｓ）、ブレラ（Ｂｕｌｌｅｒａ）属）およびク
リプトコッカス科（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃａｃｅａｅ）（例えばカンジダ（Ｃａｎｄｉｄ
ａ）属）に分類される。本発明で特に興味深いのは、サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏ
ｍｙｃｅｓ）、ピヒア（Ｐｉｃｈｉａ）、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）、
トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）、クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃ
ｅｓ）属、特にＫ．ラクティス（ｌａｃｔｉｓ）およびＫ．ドロソフィラム（ｄｒｏｓｏ
ｐｈｉｌｕｍ）、カンジダ（Ｃａｎｄｉｄａ）、ハンセニューラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ）
、シゾサッカロミセス（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）、ヤロウィア（Ｙａ
ｒｒｏｗｉａ）およびクリソポリウム（Ｃｈｒｙｓｏｐｏｒｉｕｍ）属内の種である。酵
母の分類は将来、変わるかもしれないので、本発明の目的のための酵母は、Ｓｋｉｎｎｅ
ｒ ｅｔ ａｌ．編集、１９８０）、酵母の生物学および活性（Ｂｉｌｏｇｙ ａｎｄ
Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｙｅａｓｔ）（Ｓｏｃ．Ａｐｐ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．Ｓ
ｙｍｐ．Ｓｅｒｉｅｓ Ｎｏ．９）に記載されてように定義されるものである。

先の記述に加えて、当業者は恐らく酵母の生物学および酵母遺伝子の操作に関して精通
している。例えばＢａｃｉｌａ ｅｔ ａｌ．編集（１９７８、酵母の生化学および遺伝
学（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｙｅａｓｔ）、アカ
デミック出版、ニューヨーク）；およびＲｏｓｅ ａｎｄ Ｈａｒｒｉｓｏｎ．（１９８
７、酵母（Ｔｈｅ Ｙｅａｓｔｓ）（第２版）、アカデミック出版、ロンドン）を参照に
されたい。外因性のＤＮＡを酵母宿主に導入する方法は、当該技術分野で周知である。酵
母の形質転換のためには広範な種々の方法がある。スフェロプラスト形質転換はＨｉｎｎ
ｅｎ ｅｔ ａｌ（１９７８，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ７５：１
９１９−１９３３）；Ｂｅｇｇｓ，（１９７８，Ｎａｔｕｒｅ２７５（５６７６）：１０
４−１０９）；およびＳｔｉｎｃｈｃｏｍｂ ｅｔ ａｌ．，（欧州特許出願公開第４５
，５７３号明細書；引用により本明細書に編入する）により教示され、電気穿孔はＢｅｃ
ｋｅｒ ａｎｄ Ｇａｕｒａｎｔｅ，（１９９１，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．１
９４：１８２−１８７）により教示され、酢酸リチウムはＧｉｅｔｚ ｅｔ ａｌ．（２
００２，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．３５０：８７−９６）およびＭｏｕｎｔ ｅ
ｔ ａｌ．（１９９６，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．５３：１３９−１４５）に
より教示されている。非サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）酵母の形質転換
系の総説に関しては、Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．（Ｃｒｉｔ Ｒｅｖ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏ
ｌ．２００１；２１（３）：１７７−２１８）を参照にされたい。酵母の遺伝子操作に関
する一般的手順については、Ｂａｒｒ ｅｔ ａｌ．，（１９８９、酵母の遺伝子操作（
Ｙｅａｓｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｅｎｇｉｎｅｒｒｉｎｇ）、バターワース、ボストン）を
参照にされたい。

野生型酵母および真菌細胞に加えて、外因性遺伝子の発現レベル、純度、生成したペプ
チドの翻訳後修飾プロセッシングおよび成熟ペプチドの回収および純度を強化するように
突然変異および／または選択された酵母および真菌の株が存在する。外因性ペプチドの発
現は、インスリンの発現により具体的に説明されるように細胞の分泌経路に向けることも
できる（Ｋｊｅｌｄｓｅｎ，２０００，Ａｐｐｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈ
ｎｏｌ．５４：２７７−２８６、およびその中の参考文献を参照にされたい）。一般に酵
母細胞から外因性ペプチドの分泌を引き起こすためには、キラートキシン（Ｓｔａｒｋ
ａｎｄ Ｂｏｙｄ，１９８６、ＥＭＢＯ Ｊ．１９９５−２００２）、またはアルファフ
ェロモン（Ｋｕｒｊａｎ ａｎｄ Ｈｅｒｓｋｏｗｉｔｚ，１９８２，Ｃｅｌｌ ３０：
９３３；Ｂｒａｋｅ ｅｔ ａｌ．，１９８８，Ｙｅａｓｔ ４：Ｓ４３６）の遺伝子の
もののような酵母遺伝子に由来する分泌シグナルを使用することができる。

一般に糸状菌に関して、遺伝子操作法はＫｉｎｇｈｏｒｎ ａｎｄ Ｔｕｒｎｅｒ（１
９９２，糸状菌の応用分子遺伝学（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｇｅｎｅｔｉ
ｃｓ ｏｆ Ｆｉｌａｍｅｎｔｏｕｓ Ｆｕｎｇｉ）、ブラッキー アカデミック アン
ド プロフェッショナル（Ｂｌａｃｋｉｅ Ａｃａｄｅｍｉｃ ａｎｄ Ｐｒｏｆｅｓｓ
ｉｏｎａｌ）、ニューヨーク）に見いだすことができる。適切なベクターに関するガイダ
ンスは、Ｍａｒｔｉｎｅｌｌｉ ａｎｄ Ｋｉｎｇｈｏｒｎ（１９９４，アルペルギルス
：５０年（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ：５０ ｙｅａｒｓ）、エルセビア、アムステルダム
）に見いだすことができる。
１．サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）
サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）では、ペプチドを生産するために使用
する適当な酵母ベクターにはＹＲｐ７（Ｓｔｒｕｈｌ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ
ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ７６：１０３５−１０３９，１９７８）、ＹＥｐ１３（Ｂ
ｒｏａｃｈ ｅｔ ａｌ．，Ｇｅｎｅ ８：１２１−１３３，１９７９）、ＰＯＴベクタ
ー（Ｋａｗａｓａｋｉ ｅｔ ａｌ．，米国特許第４，９３１，３７３号明細書、これは
引用により本明細書に編入する）、ｐＪＤＢ２４９およびｐＪＤＢ２１９（Ｂｅｇｇｓ，
Ｎａｔｕｒｅ ２７５：１０４−１０８，１９７８）およびそれらの誘導体を含む。酵母
での使用に好適なプロモーターは、酵母の解糖遺伝子の発現に関するプロモーター（Ｈｉ
ｔｚｅｍａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５５：１２０７３−１２０８
０，１９８０；Ａｌｂｅｒ ａｎｄ Ｋａｗａｓａｋｉ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ａｐｐｌ．Ｇｅｎ
ｅｔ．１：４１９−４３４，１９８２；Ｋａｗａｓａｋｉ，米国特許第４，５９９，３１
１号明細書）、またはアルコールデヒドロゲナーゼ遺伝子（Ｙｏｕｎｇ ｅｔ ａｌ．、
化学品のための微生物の遺伝子工学（Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｏｆ
Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｆｏｒ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、Ｈｏｌｌａｅｎｄｅｒ
ｅｔ ａｌ．，（編集）、第３５５頁、プレナム出版、ニューヨーク、１９８２；Ａｍ
ｍｅｒｅｒ，Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．１０１：１９２−２０１，１９８３）、および
ＡＤＨ２−４^ｃプロモーター（Ｒｕｓｓｅｌｌ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３０４：
６５２−６５４，１９８３；Ｉｒａｎｉ ａｎｄ Ｋｉｌｇｏｒｅ，米国特許出願第０７
／７８４，６５３号明細書、カナダ国特許第１，３０４，０２０号明細書および欧州特許
第２８４ ０４４号明細書、これらは引用により本明細書に編入する）を含む。発現単位
は転写ターミネーターも含むことができる。好適な転写ターミネーターはＴＰＩ１ターミ
ネーター（Ａｌｂｅｒ ａｎｄ Ｋａｗａｓａｋｉ，同上）である。

そのような酵母−細菌シャトルベクターの例には、Ｙｅｐ２４（Ｂｏｔｓｔｅｉｎ ｅ
ｔ ａｌ．（１９７９）Ｇｅｎｅ ８：１７−２４；ｐＣ１（Ｂｒａｋｅ ｅｔ ａｌ．
（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８１：４６４２−４６４６
）、およびＹｒｐ１７（Ｓｔｎｉｃｈｏｍｂ ｅｔ ａｌ．（１９８２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂ
ｉｏｌ．１５８：１５７）を含む。さらにプラスミド発現ベクターは高または低コピー数
プラスミドでよく、コピー数は一般に約１〜約２００の範囲である。高コピー数酵母ベク
ターの場合、一般に１つの宿主中に少なくとも１０、好ましくは少なくとも２０、そして
通常は約１５０コピーを越えない。選択したヘテロロガスなペプチドに依存して、高また
は低コピー数ベクターのいずれかが、ベクターおよび組換えペプチドが宿主に及ぼす効果
に依存して望ましい。例えばＢｒａｋｅ ｅｔ ａｌ．（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ
．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８１：４６４２−４６４６を参照にされたい。本発明のＤ
ＮＡ構築物はベクターに組み込むことにより酵母ゲノムに組み込んでもよい。そのような
ベクターの例は当該技術分野で知られている。例えばＢｏｔｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．（
１９７９）Ｇｅｎｅ ８：１７−２４を参照にされたい。

本発明を実施するために適当な酵母および他の微生物宿主に関する選択は、当該技術分
野の技術内である。特に興味深いのは、サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）
のＳ．セルビシエ（ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、Ｓ．カールスベルゲンシス（ｃａｒｌｓｂ
ｅｒｇｅｎｓｉｓ）、Ｓ．ジアスタティカス（ｄｉａｓｔａｔｉｃｕｓ）、Ｓ．ドウグラ
シー（ｄｏｕｇｌａｓｉｉ）、Ｓ．クルイベリ（ｋｌｕｙｖｅｒｉ）、Ｓ．ノルベンシス
（ｎｏｒｂｅｎｓｉｓ）およびＳ．オビホルミス（ｏｖｉｆｏｒｍｉｓ）種である。所望
のペプチドを発現させるために酵母宿主細胞を選択する時、適当な宿主細胞は、中でも良
好な分泌能力、低いタンパク質分解活性、および全体的な成長力（ｖｉｇｏｒ）を有する
ことが示されたものを含むことができる。酵母および他の微生物は一般に様々な供給源か
ら入手可能であり、それらにはカリフォルニア州、バークレーのカリフォルニア大学、生
物物理学および医学物理学部（Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ ａ
ｎｄ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｐｈｙｓｉｃｓ）、酵母遺伝子ストックセンター（Ｙｅａｓｔ
Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｓｔｏｃｋ Ｃｅｎｔｅｒ）；およびバージニア州、マナッサスのアメ
リカンタイプカルチャーコレクションを含む。総説に関しては、Ｓｔｒａｔｈｅｒｎ ｅ
ｔ ａｌ．編集．（１９８１、酵母、サッカロミセスの分子生物学（Ｔｈｅ Ｍｏｌｅｃ
ｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｙｅａｓｔ Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）
、コールドスプリングハーバーラボラトリー、コールドスプリングハーバー、ニューヨー
ク州）をに参照にされたい。

外因性ＤＮＡを酵母宿主に導入する方法は、当該技術分野では周知である。
２．ピヒア
組換えペプチドの生産のための宿主としてピヒア メタノリカ（Ｐｉｃｈｉａ ｍｅｔ
ｈａｎｏｌｉｃａ）の使用は、ＰＣＴ出願、国際公開第９７／１７４５０号、同第９７／
１７４５１号、同第９８／０２５３６号および同第９８／０２５６５号パンフレットに開
示されている。Ｐ．メタノリカ（ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）の形質転換に使用するＤＮＡ
分子は一般に、形質転換前に好ましくは直線化される二本鎖の環状プラスミドとして調製
される。Ｐ．メタノリカ（ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）でのペプチド生産には、プラスミド
中のプロモーターおよびターミネーターは、Ｐ．メタノリカ（ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）
のアルコール利用遺伝子（ＡＵＧ１またはＡＵＧ２）のようなＰ．メタノリカ（ｍｅｔｈ
ａｎｏｌｉｃａ）遺伝子のものであることが好ましい。他の有用なプロモーターにはジヒ
ドロキシアセトンシンターゼ（ＤＨＡＳ）、ギ酸デヒドロゲナーゼ（ＦＭＤ）およびカタ
ラーゼ（ＣＡＴ）遺伝子のもの、ならびに米国特許第５，２５２，７２６号明細書に開示
されているものを含む。ＤＮＡの宿主染色体への組み込みを容易にするために、宿主ＤＮ
Ａ配列により両末端を挟まれたプラスミドの全発現セグメントを有することが好ましい。
ピヒア メタノリカ（Ｐｉｃｈｉａ ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）での使用に好適な選択マ
ーカーは、ホスホリボシル−５−アミノイミダゾールカルボキシラーゼ（ＡＩＲＣ；ＥＣ
４．１．１．２１）をコードするＰ．メタノリカ（ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）ＡＤＥ２遺
伝子であり、これはａｄｅ２宿主細胞がアデニンの不存在下で成長することを可能とする
。メタノールの使用を最少にすることが望まれる大規模な工業的方法には、両方のメタノ
ール利用遺伝子（ＡＵＧ１およびＡＵＧ２）が削除されている宿主細胞が好ましい。分泌
するペプチドの生産には、液胞プロテアーゼ遺伝子（ＰＥＰ４およびＰＲＢ１）を欠く宿
主細胞が好適である。目的のペプチドをコードするＤＮＡを含むプラスミドを、Ｐ．メタ
ノリカ（ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃａ）細胞に導入することを容易にするために、電気穿孔を
使用する。指数的に減少する、２．５〜４．５ｋＶ／ｃｍ、好ましくは約３．７５ｋＶ／
ｃｍの場の強さを有するパルス電場、および１〜４０ミリ秒、最も好ましくは約２０ミリ
秒の時間定数（ｔ）を使用して、電気穿孔によりＰ．メタノリカ（ｍｅｔｈａｎｏｌｉｃ
ａ）細胞を形質転換することが好ましい。抗体フラグメントの大規模生産のためのピヒア
パストリス（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）の使用に関する総説は、Ｆｉｓｃｈｅ
ｒ ｅｔ ａｌ．（１９９９，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ａｐｐｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．３０
（Ｐｔ２）：１１７−１２０）を参照にされたい。
３．アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）
アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）種でペプチドを発現させる方法は当該技術
分野では周知であり、それらには限定するわけではないが引用により全部、本明細書に編
入するCarrez et al., 1990, Gene 94: 147-154; Contreras, 1991, Bio/Technology 9:3
78-381; Yelton et al., 1984, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81: 1470-1474; Tilburn e
t al., 1983, Gene 26: 205-221; Kelly and. Hynes, 1985, EMBO J. 4:475-479; Ballan
ce et al., 1983, Biochem. Biophys. Res. Comm. 112: 284-289; Buxton et al., 1985,
Gene 37: 207-214, and U.S. Pat. No. 4,935,349に記載されているものを含む。アスペ
ルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）で有用なプロモーターの例は、米国特許第５，２５
２，７２６号明細書に見いだされる。ペプチドの発現に有用なアスペルギルス（Ａｓｐｅ
ｒｇｉｌｌｕｓ）の株は、米国特許第４，９３５，３４９号明細書に見いだされる。外因
性ペプチドの工業的生産は、アスペルギルス ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇ
ｅｒ）およびアスペルギルス オリーゼ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｏｒｙｚａｅ）につ
いてノボエンザイム（Ｎｏｖｏｅｎｚｙｍｅｓ）から入手可能である。
４．トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）
トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）は所望のペプチドを発現させるために、他の
種の組換え宿主細胞に優るある一定の利点を有する。この微生物は大量に成長させること
が容易であり、そしてグリコシル化する能力を有し、そして組換え哺乳動物ペプチドを培
地に高い収量で効率よく分泌し、ペプチドの単離を比較的容易とする。さらに発現したペ
プチド上のグリコシル化パターンは、他の系で発現されるものよりもヒトペプチドに類似
している。しかしこれらの細胞から発現したペプチド上のグリカン構造にも差異が存在す
る。例えば末端シアル酸残基は、グリカン構造の末端のこれらの部分の存在が哺乳動物の
血流からペプチドの排除を遅らせるので、哺乳動物系におけるペプチドの治療的機能に対
して重要である。シアリル化分子が生物学的半減期を上昇させる背後にあるメカニズムは
、レクチンによるそれらの認識の低下にあると考えられる（Ｄｒｉｃｋａｍｅｒ，１９８
８，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６３：９５５７−９５６０）。しかし一般に真菌細胞は
末端シアル酸残基をペプチド上のグリカンに加えず、故に真菌細胞で合成されたペプチド
はシアル酸が除かれている。本発明に従い、この欠如は本明細書のいたるところに詳細に
記載する本発明のインビトログリカン改造方法を使用して補修する（ｒｅｍｅｄｉｅｄ）
ことができる。

改造するペプチドの生産のために宿主として有用なトリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒ
ｍａ）種には、ＱＭ６ａ、ＡＬＫＯ２４４２またはＣＢＳ３８３．７８（セントラールビ
ュロー、フォーア シンメルカルチャー（Ｃｅｎｔｒａａｌｂｕｒｅａｕ ｖｏｏｒ Ｓ
ｃｈｉｍｍｅｌｃｕｌｔｕｒｅｓ）、オースターストラート １、私書箱２７３、３７４
０ バールン社（ＡＧ Ｂａａｒｎ）、オランダ）、またはＡＴＣＣ１３６３１（アメリ
カンタイプカルチャーコレクション、マナッサス、バージニア州、１０８５２、米国、型
）のようなＴ．レーゼイ（ｒｅｅｓｅｉ）；Ｔ．ビリデ（ｖｉｒｉｄｅ）（ＣＢＳ１８９
．７９のような（ｄｅｔ．Ｗ．Ｇａｍｓ）；ＣＢＳ８１６．６８のようなＴ．ロンギブラ
キアタム（ｌｏｎｇｉｂｒａｃｈｉａｔｕｍ）（型）；Ｔ．シュードコニンギー（ｐｓｅ
ｕｄｏｋｏｎｉｎｇｉｉ）（ＭＵＣＬ１９３５８のような；Ｍｙｃｏｔｈｅｑｕｅ ｄｅ
ｌ'Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｅ Ｃａｔｈｏｌｉｑｕｅ ｄｅ Ｌｏｕｖａｉｎ）；Ｔ．サ
チュルニスポラム（ｓａｔｕｒｎｉｓｐｏｒｕｍ）ＣＢＳ３３０．７０（型）；Ｔ．ハル
ジアナム（ｈａｒｚｉａｎｕｍ） ＣＢＳ３１６．３１（ｄｅｔ．Ｗ．Ｇａｍｓ）；Ｔ．
ビルガタム（ｖｉｒｇａｔｕｍ）（Ｔ．シュードコニンギー（ｐｓｅｕｄｏｋｏｎｉｎｇ
ｉｉ））ＡＴＣＣ２４９６１を含む。最も好ましくは宿主はＴ．レーゼイ（ｒｅｅｓｅｉ
）であり、そしてより好ましくはこれはＴ．レーゼイ（ｒｅｅｓｅｉ）のＱＭ９４１４（
ＡＴＣＣ２６９２１）、ＲＵＴ−Ｃ−３０（ＡＴＣＣ５６７６５）およびＱＭ９４１４に
由来するＶＴＴ−Ｄ−７９１２５株のような高度に生産的な突然変異体（Ｎｅｖａｌａｉ
ｎｅｎ、テクニカル リサーチ センター オブ フィンランド（Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ
Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｒｅ ｏｆ Ｆｉｎｌａｎｄ）公報２６、（１９８５）、エ
スポー、フィンランド）である。

ＤＮＡでのトリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）の形質転換は、欧州特許第０２４
４２３４号明細書、Ｈａｒｋｋｉ（１９８９，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ７：５９
６−６０１）およびＵｕｓｉｔａｌｏ（１９９１，Ｊ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１７：３５−５
０）に教示されている技術を含め当該技術分野で既知の技術を使用して行う。トリコデル
マ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）の培養は、工業的規模の発酵技術でのこれまでの豊富な経
験により支持されている；例えばＦｉｎｋｅｌｓｔｅｉｎ，１９９２，糸状菌のバイオテ
クノロジー：技術および産物（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｆｉｌａｍｅｎｔｏ
ｕｓ Ｆｕｎｇｉ：Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ）、バターワース
−ヘイネマン出版、ストーンハム、マサチューセッツ州を参照にされたい。
５．クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）
クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）属に属する酵母は、組換えペプチド
の生産に宿主微生物として使用されてきた。この属の酵母により生産されるペプチドは特
にキモシン（欧州特許第９６４３０号明細書）、タウマチン（欧州特許第９６９１０号明
細書）、アルブミン、インターロイキン−１β、ＴＰＡ、ＴＰＡ、ＴＩＭＰ（欧州特許第
３６１９９１号明細書）および治療的機能を有するアルブミン誘導体（欧州特許第４１３
６２２号明細書）である。クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）属の中で特
に興味深い種にはＫ．ラクティス（ｌａｃｔｉｓ）を含む。

クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）種での組換えペプチドの発現法は、
当該技術分野で周知である。クルイベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）でのヒト
組換えペプチドの発現および分泌のためのベクターは、組換えペプチドの形質転換および
発現のための生産体として当該技術分野（Ｙｅｈ，Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｕ
ｐｐｌ．１４Ｃ：６８，Ａｂｓｔ．Ｈ４０２；Ｆｌｅｅｒ，１９９０，Ｙｅａｓｔ６（特
集）：Ｓ４４９）で既知である（Ｉｔｏ ｅｔ ａｌ．，１９８３，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉ
ｏｌ．１５３：１６３−１６８；ｖａｎ ｄｅｎ Ｂｅｒｇ，１９９０，Ｂｉｏ／Ｔｅｃ
ｈｎｏｌｏｇｙ ８：１３５−１３９；米国特許第５，６３３，１４６号明細書、国際公
開第８３０４０５０Ａ１号パンフレット、欧州特許第００９６９１０号、同第０２４１４
３５号、同第０３０１６７０号、同第０３６１９９１号明細書、すべて引用により全部、
本明細書に編入する）。遺伝子ターゲッティングおよびプラスミドシャフルによるクルイ
ベロミセス ラクティス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ｌａｃｔｉｓ）の線状ＤＮＡプ
ラスミドの遺伝子操作の総説に関しては、Ｓｃｈａｆｆｒａｔｈ ｅｔ ａｌ．（１９９
９，ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｌｅｔｔ．１７８（２）：２０１−２１０）を参照
にされたい。
６．クリソポリウム（Ｃｈｒｙｓｏｐｏｒｉｕｍ）
真菌の属であるクリソポリウム（Ｃｈｒｙｓｏｐｏｒｉｕｍ）は最近、外来組換えペプ
チドの発現に使用された。外来ペプチドを発現するために当業者がクリソポリウム（Ｃｈ
ｒｙｓｏｐｏｒｉｕｍ）を使用することができる手順の記載は、国際公開第００／２０５
５５号明細書に見いだされる（これは引用により全部、本明細書に編入する）。発現系に
特に適する種は限定するわけではないが、Ｃ．ボトリオイデス（ｂｏｔｒｙｏｉｄｅｓ）
、Ｃ．カルミカエリー（ｃａｒｍｉｃｈａｅｌｉｉ）、Ｃ．クラッシツニカタム（ｃｒａ
ｓｓｉｔｕｎｉｃａｔｕｍ）、Ｃ．ヨーローパ（ｅｕｒｏｐａｅ）、Ｃ．エボルセアンヌ
イ（ｅｖｏｌｃｅａｎｎｕｉ）、Ｆ．ファスチジウム（ｆａｓｔｉｄｉｕｍ）、Ｃ．フィ
リホルメ（ｆｉｌｉｆｏｒｍｅ）、Ｃ．ゲロギエ（ｇｅｒｏｇｉａｅ）、Ｃ．グロビフェ
ラム（ｇｌｏｂｉｆｅｒｕｍ）、Ｃ．グロビフェラム 変種 アーチクラタム（ｇｌｏｂ
ｉｆｅｒｕｍ ｖａｒ．ａｒｔｉｃｕｌａｔｕｍ）、Ｃ．グロビフェラム 変種 ニベウ
ム（ｇｌｏｂｉｆｅｒｕｍ ｖａｒ．ｎｉｖｅｕｍ）、Ｃ．ヒルンド（ｈｉｒｕｎｄｏ）
、Ｃ．ヒスパニカム（ｈｉｓｐａｎｉｃｕｍ）、Ｃ．ホルミー（ｈｏｌｍｉｉ）、Ｃ．イ
ンジカム（ｉｎｄｉｃｕｍ）、Ｃ．イノプス（ｉｎｏｐｓ）、Ｃ．ケラチノフィラム（ｋ
ｅｒａｔｉｎｏｐｈｉｌｕｍ）、Ｃ．クレイセリー（ｋｒｅｉｓｅｌｉｉ）、Ｃ．クズロ
ビアナム（ｋｕｚｕｒｏｖｉａｎｕｍ）、Ｃ．リグノラム（ｌｉｇｎｏｒｕｍ）、Ｃ．ロ
バタム（ｌｏｂａｔｕｍ）、Ｃ．ラックノヴェンセ（ｌｕｃｋｎｏｗｅｎｓｅ）、Ｃ．ラ
ックノヴェンセ（ｌｕｃｋｎｏｗｅｎｓｅ）Ｇａｒｇ２７Ｋ、Ｃ．メディウム（ｍｅｄｉ
ｕｍ）、Ｃ．メディウム 変種 スピッセスセンス（ｍｅｄｉｕｍ ｖａｒ．ｓｐｉｓｓ
ｅｓｃｅｎｓ）、Ｃ．メフィチカム（ｍｅｐｈｉｔｉｃｕｍ）、Ｃ．メルダリウム（ｍｅ
ｒｄａｒｉｕｍ）、Ｃ．メルダリウム 変種 ロゼウム（ｍｅｒｄａｒｉｕｍ ｖａｒ．
ｒｏｓｅｕｍ）、Ｃ．マイナー（ｍｉｎｏｒ）、Ｃ．パンニコーラ（ｐａｎｎｉｃｏｌａ
）、Ｃ．パルバム（ｐａｒｖｕｍ）、Ｃ．パルバム 変種 クレセンス（ｐａｒｖｕｍ
ｖａｒ．ｃｒｅｓｃｅｎｓ）、Ｃ．ピロサム（ｐｉｌｏｓｕｍ）、Ｃ．ペオドメルデリウ
ム（ｐｅｏｄｏｍｅｒｄｅｒｉｕｍ）、Ｃ．ピリホルミス（ｐｙｒｉｆｏｒｍｉｓ）、Ｃ
．クィーンズランディカム（ｑｕｅｅｎｓｌａｎｄｉｃｕｍ）、Ｃ．シグレリ（ｓｉｇｌ
ｅｒｉ）、Ｃ．スルフレウム（ｓｕｌｆｕｒｅｕｍ）、Ｃ．シンクロナム（ｓｙｎｃｈｒ
ｏｎｕｍ）、Ｃ．トロピカム（ｔｒｏｐｉｃｕｍ）、Ｃ．ウンダラタム（ｕｎｄｕｌａｔ
ｕｍ）、Ｃ．バレレナレンス（ｖａｌｌｅｎａｒｅｎｓｅ）、Ｃ．ベスペルチリウム（ｖ
ｅｓｐｅｒｔｉｌｉｕｍ）およびＣ．ゾナタム（ｚｏｎａｔｕｍ）を含む。
７．その他
シュワニオマイセス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ）を形質転換する方法は欧州特許
第３９４５３８号明細書に開示されている。アクレモニウム クリソゲナム（Ａｃｒｅｍ
ｏｎｉｕｍ ｃｈｒｙｓｏｇｅｎｕｍ）を形質転換する方法は、米国特許第５，１６２，
２２８号明細書に開示されている。ニューロスポーラ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ）を形質転
換する方法は、米国特許第４，４８６，５３３号明細書に開示されている。またシゾサッ
カロミセス ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）に特異的
な発現系も知られている（欧州特許第３８５３９１号明細書）。分裂酵母シゾサッカロミ
セス ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）でペプチドを発
現させるための一般的方法は、Ｇｉｇａ−Ｈａｍａ ａｎｄ Ｋｕｍａｇａｉ（１９９７
、分裂酵母：シゾサッカロミセス ポンベでの外来遺伝子発現（Ｆｏｒｅｉｇｎ ｇｅｎ
ｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ ｆｉｓｓｉｏｎ ｙｅａｓｔ：Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃ
ｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）、スプリンガー、ベルリン）に見いだすことができる
。
Ｃ．哺乳動物系
上記のように、哺乳動物細胞は典型的にはトリマンノシルコアに結合したさらなる糖の
数および配列について変動するＮ−グリカン構造のヘテロロガスな混合物を生産する。典
型的には哺乳動物細胞は図４右側に示すような複雑なグリカン構造を有するペプチドを生
産する。本発明の方法を使用して、最初に１次グリカン構造を同定し、次にグリカン構造
を改造するためにはどの糖が除去されるなけれければならないかを決定することにより、
哺乳動物細胞で生産されたペプチドをインビトロで改造して、所望のグリコシル化を有す
るペプチドを生成することができる。本明細書で検討するように、除去される糖によりど
の開裂酵素が使用されるかが決定され、すなわ改造方法の正確な工程は最初の基質として
使用される１次グリカン構造に依存して変動するだろう。哺乳動物細胞で一般に生産され
るグリカン構造を改造するための実例スキームは図３に示す。哺乳動物細胞でのＮ−グリ
カン生合成経路は十分に特徴付けられた（Ｍｏｒｅｍｅｎ，１９９４，Ｇｌｙｃｏｂｉｏ
ｌｏｇｙ４：１１３−１２５を参照にされたい）。グリカン合成に必要な酵素の多くが同
定され、そしてチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞系Ｌｅｃ２３（アルファ−グ
ルコシダーゼＩ欠損）およびＬｅｃ１８（新規ＧｌｃＮＡｃ−ＴＶＩＩＩ）を含め、この
酵素的経路を欠く突然変異体細胞系が単離された。これらの突然変異体細胞により生産さ
れるペプチドのグリコシル化パターンは、正常ＣＨＯ細胞に対して改変されている。本明
細書で検討するように、これらおよび他の突然変異体細胞におけるグリコシル化の欠損は
、複雑なグリカン構造を欠くペプチドを生産する目的に活かすことができる。例えばＬｅ
ｃ２３細胞により生産されたペプチドはシアル酸残基を欠き、すなわち基本的なトリマン
ノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮａｃ４にグリカン構造を減少させるために必要な酵素
的操作が少ない。このようにこれらの細胞で生産されるペプチドはグリカン改造用の好適
な基質として役立つ。当業者は既知の方法、例えばＳｔａｎｌｅｙ ｅｔ ａｌ．，１９
９０，Ｓｏｍａｔｉｃ Ｃｅｌｌ Ｍｏｌ．Ｇｅｎｅｔ．，１６：２１１−２２３に記載
されている方法に基づき、他のグリコシル化−欠損細胞系を単離し、そして同定すること
ができる。同定された、または未だ同定されていないグリコシル化−欠損細胞系の使用は
、本明細書に記載する改造方法のための好適なペプチド基質を生成する目的で本発明に含
まれる。

哺乳動物細胞中で外因性ペプチドを発現させるための発現ベクターは膨大にあり、そし
て当該技術分野では周知である。現在、多くの哺乳動物発現ベクターがとりわけノバジェ
ン（Ｎｏｖａｇｅｎ）社（マジソン、ウィスコンシン州）、ジーンセラピーシステム（Ｇ
ｅｎｅ Ｔｈｅｒａｐｙ Ｓｙｓｔｅｍ）（サンディエゴ、カリフォルニア州）、プロメ
ガ（Ｐｒｏｍｅｇａ）（マジソン、ウィスコンシン州）、クローンテック（ＣｌｏｎＴｅ
ｃｈ）社（パロ アルト、カリフォルニア州）およびストラタジーン（Ｓｔｒａｔａｇｅ
ｎｅ）（ラ ジョラ、カリフォルニア）を含む会社から市販されている。

外因性ペプチドの発現に特に適合した数種の哺乳動物細胞系がある。典型的には哺乳動
物細胞系は不死化した哺乳動物から抽出した腫瘍細胞（すなわちそれらは培養中、本質的
に無限に複製できる）に由来する。これらの細胞系には限定するわけではないがＣＨＯ（
チャイニーズハムスター卵巣、例えばＣＨＯ−Ｋ１；ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＣＬ６１）およ
びそれらの変異体、ＮＳ０（マウス 骨髄腫）、ＢＮＫ、ＢＮＫ５７０（ＡＴＣＣ Ｎｏ
．ＣＲＬ１０３１４）、ＢＨＫ（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１６３２）、Ｐｅｒ．Ｃ６（商
標）（不死化ヒト細胞、Ｃｒｕｃｅｌｌ Ｎ．Ｖ．，ライデン、オランダ）、ＣＯＳ−１
（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１６５０）、ＣＯＳ−７（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１６５１）
、ＨＥＫ２９３、マウスＬ細胞、Ｔリンパ球細胞系、ＢＷ５１４７細胞およびＭＤＣＫ（
Ｍａｄｉｎ−Ｄａｒｂｙ イヌ腎臓）、ＨｅＬａ（ヒト）、Ａ５４９（ヒト肺癌腫）、２
９３（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ１５７３；Ｇｒａｈａｍ ｅｔ ａｌ．，１９７７，Ｇｅ
ｎ．Ｖｉｒｏｌ．３６：５９−７２）、ＢＧＭＫ（バッファローグリーンモンキーの腎臓
）、Ｈｅｐ−２（ヒト類表皮咽頭癌腫）、ＬＬＣ−ＭＫ_２（アフリカグリーンモンキーの
腎臓）、ＭｃＣｏｙ、ＮＣＩ−Ｈ２９２（ヒト肺粘膜類表皮癌腫管）、ＲＤ（横紋筋肉腫
）、Ｖｅｒｏ（アフリカグリーンモンキーの腎臓）、ＨＥＬ（ヒト胚性肺）、ヒト胎児Ｌ
ｕｎｇ−Ｃｈａｎｇ、ＭＲＣ５（ヒト胚性肺）、ＭＲＨＦ（ヒト包皮）、およびＷＩ−３
８（ヒト胚性肺）を含む。幾つかの場合では、治療用ペプチドが発現される細胞は処置す
る患者のものでよく、あるいはそれらは別の関連または非関連哺乳動物に由来するもので
もよい。例えば繊維芽細胞は哺乳動物の皮膚組織から単離し、そして培養し、そしてイン
ビトロで形質転換させることができる。この技術はトランスカリオティック セラピー（
Ｔｒａｎｓｋａｒｙｏｔｉｃ Ｔｈｅｒａｐｉｅｓ）社（ケンブリッジ、マサチューセッ
ツ州）から市販されている。ほとんどすべての現在使用されている細胞系はアメリカンタ
イプカルチャーコレクション（ＡＴＣＣ、マナッサス、バージニア州）およびバイオウィ
ッタカー（ＢｉｏＷｈｉｔｔａｋｅｒ）（ウォーカーズヴィル、メリーランド州）から入
手可能である。

哺乳動物細胞は、当該技術分野で周知な幾つかの技術の１つを使用してＤＮＡを用いて
形質転換させることができる。そのような技術には限定するわけではないが、とりわけリ
ン酸カルシウム形質転換(Chen and Okayama, 1988; Graham and van der Eb, 1973; Cors
aro and Pearson, 1981, Somatic Cell Genetics 7:603), ジエチルアミノエチル (DEAE)
-デキストラン トランスフェクション (Fujita et al., 1986; Lopata et al., 1984; S
elden et al., 1986,), 電気窄孔 (Neumann et al., 1982,; Potter, 1988,;Potter et a
l., 1984,; Wong and Neuman, 1982), カチオン性脂質試薬のトランスフェクション (Elr
oy-Stein and Moss, 1990; Feigner et al., 1987; Rose et al., 1991; Whitt et al.,
1990; Hawley-Nelson et al., 1993, Focus 15:73; Ciccarone et al., 1993, Focus 15:
80), レトロウイルス (Cepko et al., 1984; Miller and Baltimore, 1986; Pear et al.
, 1993; Austin and Cepko, 1990; Bodine et al., 1991; Fekete and Cepko, 1993; Lem
ischka et al., 1986; Turner et al., 1990; Williams et al., 1984; Miller and Rosm
an, 1989, BioTechniques 7:980-90; Wang and Finer , 1996, Nature Med. 2:714-6),
ポリブレン (Chaney et al, 1986; Kawai and Nishizawa, 1984), マイクロインジェクシ
ョン (Capecchi, 1980), およびプロトプラスト融合 (Rassoulzadegan et al., 1982; Sa
ndri-Goldin et al., 1981; Schaffer, 1980)を含む。一般に形質転換技術に関しては、
Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（２００１、モレキュラークローニング：ア ラボラト
リーマニュアル、コールドスプリングハーバーラボラトリー、ニューヨーク）およびＡｕ
ｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（２００２、分子生物学の現在のプロトコール、ジョン ウィ
リー＆サンズ、ニューヨーク）を参照にされたい。

最近、昆虫細胞の形質転換で広く知られているバキュロウイルス系が哺乳動物細胞の安
定な形質転換に適合させられた（総説に関しては、Ｋｏａｔ ａｎｄ Ｃｏｎｄｒｅａｙ
，２００２，Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０：１７３−１８０、およびそこ
に引用されている参考文献を参照にされたい）。培養した哺乳動物細胞中の組換えペプチ
ドの生産が、例えば米国特許第４，７１３，３３９号、同；第４，７８４，９５０号；同
第４，５７９，８２１号；および同第４，６５６，１３４号明細書に開示されている。セ
ルトレンド（Ｃｅｌｌ Ｔｒｅｎｄｓ）（ミドルタウン、メリーランド州）を含む数社が
、哺乳動物細胞の形質転換および培養のサービスを提供している。哺乳動物細胞を培養す
る技術は当該技術分野で周知であり、そしてさらにＨａｕｓｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９
７，哺乳動物細胞のバイオテクノロジー（Ｍａｍｍａｌｉａｎ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｔｅｃ
ｈｎｏｌｏｇｙ）、ウォルター デ グルイャー（Ｗａｌｔｅｒ ｄｅ Ｇｒｕｙｅｒ）
社、ホーソーン、ニューヨーク州）、およびＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（２００１
、モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバ
ーおよびそこに引用されている参考文献）に見いだされる。
Ｄ．昆虫
昆虫細胞、そして特に培養した昆虫細胞は、シアリル化されることが稀で、そして通常
は結合したさらなるフコース残基を持つかまたは持たないかもしれないマンノース残基を
含んでなるＮ−結合グリカン構造を有するペプチドを発現する。培養した昆虫細胞で生産
されるペプチド上に存在するグリカン構造の型の例は、図７およびそれらのマンノースグ
リカンに示す。

昆虫細胞中でバキュロウイルスが媒介する発現は、組換えペプチドの生産について特に
よく樹立されるようになった（Ａｌｔｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｇｌｙｃｏｃ
ｏｎｊｕｇａｔｅ Ｊ．１６：１０９−１２３）。ペプチドのホールディングおよび翻訳
後プロセッシングに関して、昆虫細胞は唯一、哺乳動物細胞に次ぐ。しかし上記のように
昆虫細胞中でのペプチドのＮ−グリコシル化は、多くの観点で哺乳動物細胞でのＮ−グリ
コシル化とは異なり、特に昆虫細胞は３個だけ、または時にわずか２個のマンノース残基
を含むオリゴ糖を含んでなる短縮化されたグリカン構造を頻繁に生成する点で異なる。こ
れらの構造はさらにフコース残基で置換されているかもしれない。

本発明に従い昆虫細胞で生産されるペプチドは最初に、場合により任意の置換フコース
残基を適切なフコシダーゼ酵素を使用して除去することにより、インビトロで改造されて
所望のグリコシル化を持つペプチドを生成することができる。ペプチドがフコース残基の
除去後に基本的なトリマンノシルコア構造を含んでなる場合、所望のグリコシル化を有す
るペプチドを生成するために必要なすべてのことは、適切な糖をトリマンノシルコア構造
にインビトロで付加することである。ペプチドがフコース残基の除去後のグリカン構造に
２個のマンノース残基のみを含む場合、第３のマンノース残基をマンノシルトランスフェ
ラーゼ酵素およびＧＤＰ−マンノースのような適切な供与体分子を使用して加え、そして
その後に適切な残基を加えて所望するグリコシル化を有するペプチドを生成する。

昆虫細胞を形質転換するためのバキュロウイルスの使用に関するプロトコールは当業者
には周知である。昆虫細胞中でペプチドを発現させるためのバキュロウイルス系の使用に
対する手順を提供する数冊の本が出版された。これらの本には限定するわけではないが、
Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ（バキュロウイルス発現プロトコール（Ｂａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ
Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ）、１９９８，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏ
ｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ、３９巻、ヒュマナ出版）、Ｏ'Ｒｅｉｌｌｙ ｅｔ
ａｌ．（１９９４、バキュロウイルス発現ベクター：ア ラボラトリーマニュアル（Ｂａ
ｃｕｌｏｖｉｒｕｓ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｖｅｃｔｏｒ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
Ｍａｎｕａｌ）、オックスフォード大学出版）、およびＫｉｎｇ ａｎｄ Ｐｏｓｓｅ
ｅ（１９９２、バキュロウイルス発現系：ア ラボラトリーガイド（Ｂａｃｕｌｏｖｉｒ
ｕｓ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｇｕｉｄｅ）
、チャップマン＆ホール（Ｃｈａｐｍａｎ＆Ｈａｌｌ））を含む。さらにＬｕｃｋｌｏｗ
（１９９３，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．４：５６４−５７２）および
Ｍｉｌｌｅｒ（１９９３，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｇｅｎｅｔ．Ｄｅｖ．３：９７−１０１
）のような報告もある。

外来タンパク質のバキュロウイルス発現用の系に関する多くの特許も発効された。これ
らの特許には限定するわけではないが、米国特許第６，２１０，９６６号明細書（グルタ
ミンを欠き、そしてアンモニウム塩を含む昆虫細胞に関する培養基）、米国特許第６，０
９０，５８４号明細書（組換えペプチドを生産するためのＢＶＡＣｓ（バキュロウイルス
人工染色体）の使用）、米国特許第５，８７１，９８６号明細書（哺乳動物細胞中で組換
え核酸を発現させるためのバキュロウイルスの使用）、米国特許第５，７５９，８０９号
明細書（昆虫細胞中でのペプチドの発現法および昆虫を殺す方法）、米国特許第５，７５
３，２２０号明細書（システインプロテアーゼ遺伝子欠損バキュロウイルス、その生産法
、およびそれを使用することによる経済的なペプチドの生産法）、米国特許第５，７５０
，３８３号明細書（バキュロウイルスクローニングシステム）、米国特許第５，７３１，
１８２号明細書（哺乳動物細胞中で組換え核酸を発現させるための非−哺乳動物ＤＮＡウ
イルス）、米国特許第５，７２８，５８０号明細書（昆虫細胞系で単一細胞懸濁液を誘導
する方法および培養基）、米国特許第５，５８３，０２３号明細書（修飾されたバキュロ
ウイルス、その調製法および遺伝子発現ベクターとしてのその応用）、米国特許第５，５
７１，７０９号明細書（修飾されたバキュロウイルスおよびバキュロウイルス発現ベクタ
ー）、米国特許第５，５２１，２９９号明細書（バキュロウイルス感染を検出するための
オリゴヌクレオチド）、米国特許第５，５１６，６５７号明細書（分泌および膜−結合ペ
プチドを発現させるためのバキュロウイルスベクター）、米国特許第５，４７５，０９０
号明細書（宿主昆虫のウイルス感染を強化するペプチドをコードする遺伝子）、米国特許
第５，４７２，８５８号明細書（昆虫の幼虫での組換えペプチドの生産）、米国特許第５
，３４８，８８６号明細書（細菌での組換え真核ウイルスの生産法）、米国特許第５，３
２２，７７４号明細書（組換えバキュロウイルス発現系での原核リーダー配列）、米国特
許第５，２７８，０５０号明細書（昆虫系での組換え遺伝子のプロセッシングおよび分泌
の効率を改善するための方法）、米国特許第５，２４４，８０５号明細書（バキュロウイ
ルス発現ベクター）、米国特許第５，２２９，２９３号明細書（組換えバキュロウイルス
）、米国特許第５，１９４，３７６号明細書（組換えペプチドを高レベルで生産すること
ができるバキュロウイルス発現系）、米国特許第５，１７９，００７号明細書（組換えペ
プチド精製のための方法およびベクター）、米国特許第５，１６９，７８４号明細書（バ
キュロウイルス二重プロモーター発現ベクター）、米国特許第５，１６２，２２２号明細
書（安定に形質転換された昆虫細胞または組換えバキュロウイルスでの組換え核酸の発現
のためのバキュロウイルス初期プロモーターの使用）、米国特許第５，１５５，０３７号
明細書（昆虫系での組換え核酸のプロセッシングおよび分泌の効率を改善するために有用
な昆虫シグナル配列）、米国特許第５，１４７，７８８号明細書（バキュロウイルスベク
ターおよび使用法）、米国特許第５，１１０，７２９号明細書（培養した細胞中でバキュ
ロウイルスベクターを使用してペプチドを生産する方法）、米国特許第５，０７７，２１
４号明細書（安定に形質転換された昆虫細胞で組換え遺伝子を発現するためのバキュロウ
イルス初期プロモーターの使用）、米国特許第５，０２３，３２８号明細書（鱗翅目ＡＫ
Ｈシグナル配列）および米国特許第４，８７９，２３６号および同第４，７４５，０５１
明細書（組換えバキュロウイルス発現ベクターを生産する方法）を含む。前述のすべての
特許は引用により全部、本明細書に編入する。

現在、幾つかの異なる種起源の昆虫細胞系がペプチド発現に使用され、そしてこれらの
系は当業者には周知である。問題の昆虫細胞系は限定するわけではないが、中でも一般に
双翅目および鱗翅目の昆虫細胞、Ｓｆ９およびそれらの変異体（ヤガ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅ
ｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）、アメリカヒトリガ（Ｅｓｔｉｇｍｅｎｅ ａｃｒｅａ）
、イラクサギンウワバ（Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａ ｎｉ）、カイコガ（Ｂｏｍｂｙｘ
ｍｏｒｉ）、マラコソマ ジシットリ（Ｍａｌａｃｏｓｏｍａ ｄｉｓｓｔｒｉ）、キイ
ロショウジョウバエ属のＫｃ１およびＳＬ２系および蚊を含む。
Ｅ．植物
ペプチド生産体としての植物細胞は、別口の話題を提示する。植物により生産されるＮ
−結合グリカンはトリマンノシルコア構造を含んでなり、この五糖骨格は図６に示すよう
に数個の異なるさらなる糖を含んでなることができる。例えば例として、トリマンノシル
コア構造はβ１，２結合キシロース残基およびα１，３結合フコース残基に置き換えられ
る。さらに植物細胞はＭａｎ５ＧｌｃＮＡｃ２構造も生産することができる。植物細胞中
で生産されたペプチドはしばしば、グリカン構造上のコアα１，３フコースおよびキシロ
ースの存在の結果として高度に抗原性であり、そして末端シアル酸残基の不存在から哺乳
動物に導入された時、血流から迅速に排除される。したがってこれらのペプチドは本明細
書で提供する方法を使用して改造されない限り、それらは一般には哺乳動物の治療薬とし
ては適さないと考えられる。植物細胞中で発現した幾つかのモノクローナル抗体がマウス
で非−免疫原性であることが判明したが、これはグリカン鎖がこれらの抗体中のＦｃ領域
に埋め込まれたので免疫原性ではなかったらしい（Ｃｈａｒｇｅｌｅｇｕｅ ｅｔ ａｌ
．，２０００，Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ Ｒｅｓ．９（３）：１８７−１９４）。

本明細書で提供する指示に従い、今、植物細胞で生産されたペプチドを生成することが
可能であり、ここでペプチド上に存在する増加した数のグリカン構造が基本的なトリマン
ノシルコア構造またはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を含んでなる。これはフコシダーゼを
含む適切なグリコシダーゼの組み合わせを使用して、基本的なトリマンノシルコア構造ま
たはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造に到達するまでインビトロでさらなる糖を開裂すること
により達成される。これらの開裂反応には、哺乳動物に導入した時に最終的なペプチドの
抗原性を縮小させるために、構造からフコースまたはキシロース残基の除去も含むべきで
ある。フコースおよびキシロース残基をトリマンノシルコア構造に付加することを阻害す
る突然変異を有する植物細胞は、当該技術分野では知られている（ｖｏｎ Ｓｃｈａｅｗ
ｅｎ ｅｔ ａｌ．，１９９３，Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ １０２：１１０９
−１１１８）。フコースおよびキシロースを欠いたグリカンを有するペプチドを生産する
ためのこれらの細胞の使用は本発明の意図するところである。基本的なトリマンノシルコ
アまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造の生産で、さらなる糖がそれらに結合されて、哺乳
動物での治療薬的使用に適する所望のグリコシル化を有するペプチドに達することができ
る。

多くの人がトランスジェニック植物は製薬学的ペプチドの発現系として選択されると考
えている。潜在的に植物は組換えペプチドのより廉価な供給源を提供することができる。
植物での組換えペプチドの生産コストは、同じペプチドを大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で生産
するコストよりも１０から５０倍低くできると予想された。動物と較べて植物でのコドン
利用頻度にわずかな差異があるものの、これらは組換えＤＮＡ配列を調整することにより
相補できる（Ｋｕｓｎａｄｉ ｅｔ ａｌ．，１９９７，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏ
ｅｎｇ．５６：４７３−４８４；Ｋｈｏｕｄｉ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｂｉｏｔｅｃ
ｈｎｏｌ．Ｂｉｏｅｎｇ．１３５−１４３；Ｈｏｏｄ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ａｄｖ
．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．Ｂｉｏｌ．４６４：１２７−１４７を参照されたい）。さらにペプチ
ド合成、分泌および翻訳後修飾は植物のグリコシル化にわずかな差異があるだけで、植物
と動物で大変似ている（Ｆｉｓｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．，２０００，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅ
ｇｕｌ．Ｈｏｍｅｓｔ．Ａｇｅｎｔｓ １４：８３−９２を参照にされたい）。次いでト
ランスジェニック植物からの産物は動物病原体、微生物トキシンおよび発癌性配列の混入
も少ないと思われる。

植物細胞中での組換えペプチドの発現は当該技術分野では周知である。トランスジェニ
ック植物に加えて、ペプチドはトランスジェニック植物細胞培養（Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．
，１９９７，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．７：７８３−７８７）、および組換え植物ウイルスを接
種した非−トランスジェニック植物でも生産され得る。植物細胞の遺伝子形質転換に関す
るプロトコールを記載する数冊の本が出版された：Ｐｏｔｒｙｋｕｓ（１９９５、植物へ
の遺伝子転移（Ｇｅｎｅ ｔｒａｎｓｆｅｒ ｔｏ ｐｌａｎｔｓ）、スプリンガー、ニ
ューヨーク）、Ｎｉｃｋｏｌｏｆｆ（１９９５、植物細胞の電気穿孔および電気融合プロ
トコール（Ｐｌａｎｔ ｃｅｌｌ ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｌｅｃ
ｔｒｏｆｕｓｉｏｎ ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ）、ヒューマナ出版、トトワ、ニューヨーク）
およびＤｒａｐｅｒ（１９８８、植物遺伝子形質転換（Ｐｌａｎｔ ｇｅｎｅｔｉｃ ｔ
ｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ）、オックスフォード出版、ボストン）。

現在、組換え遺伝子材料を用いて植物細胞を安定に形質転換させるために、幾つかの方
法が使用されている。これらの方法は限定するわけではないがアグロバクテリウム（Ａｇ
ｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）形質転換(Bechtold and Pelletier, 1998; Escudero and Hohn
, 1997; Hansen and Chilton, 1999; Touraev et al., 1997), バイオリスティックス（
ミクロプロジェクティル(microprojectiles)） (Finer et al., 1999; Hansen and Chilt
on, 1999; Shilito, 1999), プロトプラストの電気窄孔 (Fromm et al., 1985, Ou-Lee e
t al., 1986; Rhodes et al., 1988; Saunders et al., 1989; Trick et al., 1997), ポ
リエチレン グリコール処理 (Shiltio, 1999; Trick et al., 1997), 植物内 マイクロ
インジェクション (Leduc et al., 1996; Zhou et al., 1983), 種子 インビビッション
(Trick et al., 1997), レーザー ビーム (1996), およびシリコン カーバイド ウイ
スカ (Thompson et al., 1995；米国特許出願第２００２０１０００７７号明細書、引用
により全部、本明細書に編入する）を含む。

多くの種類の植物は、形質転換され、そして外因性ペプチドを発現し易い。本発明の改
造方法で使用されるペプチドを発現するために特に興味深い植物には、限定するわけでは
ないが、Arabidopsis thalliana, ナタネ (Brassica spp.; Ruiz and Blumwald, 2002, P
lanta 214:965-969)), ダイズ (Glycine max), ヒマワリ (Helianthus unnuus), ギニア
アブラヤシ (Elaeis guineeis), アメリカホドイモ (ラッカセイ, Arachis hypogaea;
Deng et al., 2001, Cell. Res. 11:156-160), ココヤシ (Cocus nucifera), キャスター
(Ricinus communis), ベニバナ (Carthamus tinctorius), カラシナ (Brassica spp. an
d Sinapis alba), コリアンダー, (Coriandrum sativum), カボチャ (Cucurbita maxima;
Spencer and Snow, 2001, Heredity 86(Pt 6): 694-702), 亜麻子／亜麻 (Linum usitat
issimum; Lamblin et al., 2001, Physiol Plant 112:223-232), ブラジル ナッツ (Ber
tholletia excelsa), ホホバ (Simmondsia chinensis), トウモロコシ (Zea mays; Hood
et al., 1999, Adv. Exp. Med. Biol. 464:127-147; Hood et al., 1997, Mol. Breed. 3
:291-306; Petolino et al., 2000, Transgenic Research 9:1-9), アルファルファ (Kho
udi et al., 1999, Biotechnol. Bioeng. 64:135-143), タバコ (Nicotiana tabacum; Wr
ight et al., Transgenic Res. 10:177-181; Frigerio et al., 2000, Plant Physiol. 1
23:1483-1493; Cramer et al., 1996, Ann. New York Acad. Sci. 792:62-8-71; Cabanes
-Macheteau et al., 1999, Glycobiology 9:365-372; Ruggiero et al., 2000, FEBS Let
t. 469:132-1 36), キャノーラ (Bai et al., 2001, Biotechnol. Prog. 17:168- 174; Z
hang et al., 2000, J. Anim. Sci. 78: 2868-2878)), ジャガイモ (Tacket et al., 199
8, J. Infect. Dis. 182:302-305; Richter et al., 2000, Nat. Biotechnol. 18:1167-1
171; Chong et al., 2000, Transgenic Res. 9:71-78), アルファルファ (Wingdorovitz
et al., 1999, Virology 255:347-353), エンドウ (Pisum sativum; Perrin et al., 200
0, Mol. Breed. 6:345-352), コメ (Oryza sativa; Stoger et al., 2000, Plant Mol. B
iol. 42:583-590), ワタ (Gossypium hirsutum; Kornyeyev et al., 2001, Physiol Plan
t 113:323-331), オオムギ (Hordeum vulgare; Petersen et al., 2002, Plant Mol Biol
49:45-58); コムギ (Triticum spp.; Pellegrineschi et al., 2002, Genome 45:421-43
0) およびインゲン (Vicia spp.; Saalbach et al., 1994, Mol Gen Genet 242: 226-236
)を含む。

組換え核酸の発現が培養した細胞中ではなく植物全体であることを望む場合、植物細胞
は最初にペプチドをコードするＤＮＡで形質転換され、その後、植物を再生させる。これ
には典型的には各植物種に至適化された組織培養手順が関与する。植物を再生するプロト
コールはすでに多くの種について当該技術分野で周知である。さら他の種に関するプロト
コールは、日常的な実験を使用して当業者により開発され得る。植物の再生に関する手順
を記載する多数の研究用マニュアルが利用可能であり、それらには限定するわけではない
がＳｍｉｔｈ（２０００、植物組織培養：技法および実験（Ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ
ｃｕｌｔｕｒｅ：ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ａｎｄ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ）、アカデミ
ック出版、サンディエゴ）、Ｂｈｏｊｗａｎｉ ａｎｄ Ｒａｚｄａｎ（１９９６、植物
組織培養：理論および実践（Ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ：ｔｈｅｏｒｙ
ａｎｄ ｐｒａｃｔｉｃｅ）、エルセビア サイエンス出版、アムステルダム）、Ｉｓ
ｌａｍ（１９９６、植物組織培養（Ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ）、オッ
クスフォード＆ＩＢＨ出版社、ニューデリー、インド）、Ｄｏｄｄｓ ａｎｄ Ｒｏｂｅ
ｒｔｓ（１９９５、植物組織培養における実験（Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ ｉｎ ｐｌａ
ｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ）、ニューヨーク；ケンブリッジ大学出版、ケンブ
リッジ、イギリス）、Ｂｈｏｊｗａｎｉ（植物組織培養：応用および限界（Ｐｌａｎｔ
ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ：ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｌｉｍｉｔａｔｉ
ｏｎｓ）、エルセビア、アムステルダム、１９９０）、Ｔｒｉｇｉａｎｏ ａｎｄ Ｇｒ
ａｙ（２０００、植物組織培養の概念および実験実習（Ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕ
ｌｔｕｒｅ ｃｏｎｃｅｐｔｓ ａｎｄ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｅｘｅｒｃｉｓｅｓ）
、ＣＲＣ出版、ボカ ラトン、フロリダ州）およびＬｉｎｄｓｅｙ（１９９１、植物組織
培養マニュアル：基礎および応用（Ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ ｍａｎ
ｕａｌ：ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌｓ ａｎｄ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ）、クルヴァー
アカデミック（Ｋｌｕｗｅｒ Ａｃａｄｅｍｉｃ）、ボストン）を含む。

植物から組換えペプチドを精製することは潜在的に経費がかさみ、これらの経費を最少
にするために幾つかの系が開発された。１つの方法は合成されるペプチドを種子の内胚乳
に向け、ここからペプチドを容易に抽出することができる（Ｗｒｉｇｈｔ ｅｔ ａｌ．
，２００１，Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ Ｒｅｓ．１０：１７７−１８１，Ｇｕｄａ ｅｔ
ａｌ．，２０００，Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｒｅｓ．１９：２５７−２６２；および米国
特許第５．７６７，３７９号明細書、これらは引用により全部、本明細書に編入する）。
別の取り組みは組換えペプチドと澱粉、粉または油のような従来の植物産物とを同時抽出
することである。油−種子のナタネでは、植物中で発現させた時にオレオシン−ヒュルデ
ィン（ｈｕｒｕｄｉｎ）の融合ペプチドは種子の油体に結合し、そして油と一緒に植物の
種子から抽出することができる（Ｐａｒｍｅｎｔｅｒ，１９９５，Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．
Ｂｉｏｌ．２９：１１６７−１１８０；米国特許第５，６５０，５５４号、同第５，７９
２，９２２号、同第５，９４８，６８２号および同第６，２８８，３０４号明細書、なら
びに米国特許出願第２００２／００３７３０３号明細書、これらすべてが引用により全部
、本明細書に編入される）。この取り組みに関する変更では、オレオシンを外因性の問題
の同時発現ペプチドに親和性を有するペプチドに融合させる（米国特許第５，８５６，４
５２号明細書、引用により全部、本明細書に編入する）。

クロロプラストのような植物プラスチド中での組換えペプチドの発現は、原核細胞での
状況と同様、それに結合したグリカン構造を持たないペプチドを生じる。しかしそのよう
なペプチドの収量はこれらの植物細胞オルガネラで発現させた時に格段に大きく、すなわ
ちこの種の発現系は他の系に優る利点を有することができる。外因性ペプチドの高等植物
中のプラスチド発現に関する技術の一般的総説については、Ｈａｇｅｒ ａｎｄ Ｂｅｃ
ｋ（２０００，Ａｐｐｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．５４：３０２−
３１０およびそれに引用されている文献）を参照にされたい。プラスチド発現はタバコ（
例えばＳｔａｕｂ ｅｔ ａｌ．，２０００，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１８：３
３３−３３８を参照にされたい）で特に成功した。
Ｆ．トランスジェニック動物
動物（例えば哺乳動物）の受精卵への組換えＤＮＡの導入は、トランスジェニック動物
技術で標準的な多数の技術を使用して行うことができる。例えばＨｏｇａｎ ｅｔ ａｌ
．，マウス胚の操作；ア ラボラトリーマニュアル（Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｎｇ ｔｈｅ
Ｍｏｕｓｅ Ｅｍｂｒｙｏ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ）、コールドス
プリングハーバーラボラトリー出版、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク州、１
９８６；および米国特許第５，８１１，６３４号明細書（これは引用により全部、本明細
書に編入する）を参照にされたい。最も普通には組換えＤＮＡは前核マイクロインジェク
ションにより胚に導入されるGordon et al., 1980, PNAS 77: 7380-7384; Gordon and Ru
ddle, 1981, Science 214:1244-1246; Brinster et al., 1981, Cell 27:223-231; Costa
ntini and Lacy, 1981, Nature 294:92-94）。マイクロインジェクションは広範な様々な
種に応用可能な利点を有する。着床前の胚もレトロウイルスで形質転換することができる
（Jaenisch and Mintz, 1974, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S. A. 71:1250-1254; Jaenisc
h et al., 1976, Hamatol Bluttransfus. 19:341-356; Stuhlmann et al., 1984, Proc.
Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81:7151-7155）。レトロウイルスが媒介する形質転換は１コピ
ーの組換え核酸を細胞へ加える利点があるが、高度なモザイク現象を生じる。最も最近で
は、胚性幹細胞が媒介する技法が使用され（Ｇｏｓｓｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９８６，
Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，８３：９０６５−９０６９）、全染
色体セグメントの転移（Ｌａｖｉｔｒａｎｏ ｅｔ ａｌ．，１９８９，Ｃｅｌｌ ５７
：７１７−７２３）およびインビトロ受精と組み合わせた配偶子トランスフェクション（
Ｌａｖｉｔｒａｎｏ ｅｔ ａｌ．，１９８９，Ｃｅｌｌ ５７：７１７−７２３）も使
用された。これらの技法を開示した研究手順に関する数冊の本が出版された：Ｃｉｄ−Ａ
ｒｒｅｇｕｉ ａｎｄ Ｇａｒｃｉａ−Ｃａａｒａｎｃａ（１９９８，マイクロインジェ
クションおよびトランスジェネシス：方法およびプロトコール（Ｍｉｃｒｏｉｎｊｅｃｔ
ｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒａｎｓｇｅｎｅｓｉｓ：Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔ
ｏｃｏｌｓ）、スプリンガー、ベルリン）、Ｃｌａｒｋｅ（２００２、トランスジェネシ
ス技法：原理およびプロトコール（Ｔｒａｎｓｇｅｎｅｓｉｓ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ：
Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ）、ヒューマナ出版、トトワ、ニュ
ージャージー州）およびＰｉｎｋｅｒｔ（１９９４、トランスジェニック動物技法：ア
ラボラトリーハンドブック（Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇ
ｙ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｈａｎｄｂｏｏｋ）、アカデミック出版、サンディエゴ
）。

いったん組換えＤＮＡが卵に導入されれば、卵を短時間インキューベーションし、そし
て次いで卵を得た同じ種の偽妊娠動物に移す（Ｈｏｇａｎ ｅｔ ａｌ．，同上）。哺乳
動物の場合、１回の実験あたり典型的には１２５個の卵を注入し、そのおよそ３分の２が
この手順で生き残る。２０個の生きている卵を偽妊娠哺乳動物に移し、その４〜１０個が
生きている子孫に生育する。典型的には１０〜３０％の子孫（マウスの場合）が組換えＤ
ＮＡを持つ。

全動物体を本発明のペプチドの発現系として使用することができるが、好適な態様では
外因性ペプチドは動物の産物中に蓄積し、そこから動物を傷つけずに回収できる。好適な
態様では、外因性ペプチドは乳、卵、毛髪、血液および尿に蓄積する。

組換えペプチドが動物の乳に蓄積する場合、適当な哺乳動物は反芻動物、有蹄動物、家
畜および酪農動物である。特に好適な動物はヤギ、ヒツジ、ラクダ、雌ウシ、ブタ、ウマ
、牡ウシおよびラマである。乳の中に組換えペプチドを蓄積するトランスジェニック雌ウ
シを作出する方法は周知である：Ｎｅｗｔｏｎ（１９９９，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔ
ｈｏｄｓ２３１：１５９−１６７）、Ｅｂｅｒｔ ｅｔ ａｌ．（１９９１，Ｂｉｏｔｅ
ｃｈｎｏｌｏｇｙ ９：８３５−８３８）および米国特許第６，２１０，７３６号、同第
５，８４９，９９２号、同第５，８４３，７０５号、同第５，８２７，６９０号、同第６
，２２２，０９４号明細書（これらすべては引用により全部、本明細書に編入する）を参
照にされたい。所望する組換えペプチドを生産するトランスジェニック哺乳動物の子孫（
ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ）は、マサチューセッツ州、フラミンガムのＧＴＣバイオセラピュ
ーティックス（Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ）から販売されている。

組換えペプチドが卵に蓄積される場合、適当な鳥には限定するわけではないがニワトリ
、アヒルおよび七面鳥を含む。他の興味深い動物には限定するわけではないが、鳥類の他
の種、魚、爬虫類および両生類を含む。レトロウイルス形質転換による組換えＤＮＡのニ
ワトリへの導入は、当該技術分野では周知である：Thoraval et al. (1995, Transgenic
Research 4:369-376), Bosselman et al., (1989, Science 243: 533-535), Petropoulos
et al. (1992, J. Virol. 66: 3391-3397)、米国特許第５，１６２，２１５号明細書（
引用により全部、本明細書に編入する）。組換えＤＮＡを用いたニワトリの成功裏の形質
転換も達成され、ここでＤＮＡは胚盤葉細胞に導入され、そしてそのようにしてトランス
フェクトされた胚盤葉細胞が胚に導入された：Brazolot et al. (1991, Mol. Reprod. De
v. 30:304-312), Fraser, et al. (1993, Int. J. Dev. Biol. 37:381-385), and Petitt
e et al. (1990, Development 108: 185-189）。トランスジェニックニワトリが所望のペ
プチドを発現するかどうかを評価するために、高処理技法が開発された（Ｈａｒｖｅｙ
ｅｔ ａｌ．，２００２，Ｐｏｕｌｔ．Ｓｃｉ．８１：２０２−２１２、米国特許第６，
４２３，４８８号明細書、引用により全部、本明細書に編入する）。組換えＤＮＡを用い
たニワトリのレトロウイルス形質転換を使用して、外因性ベータ−ラクタマーゼがニワト
リの卵白中に蓄積した（Ｈａｒｖｅｙ ｅｔ ａｌ．，２００２，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃ
ｈｏｌ．２０（４）：３９６−３９９）。ニワトリが生産する卵中の外因性ペプチドの生
産物は、ジョージア州、アテネのアビジェニックス（ＡｖｉＧｅｎｉｃｓ）から販売され
ている。
Ｇ．細菌
細菌で組換え的に発現したペプチドは一般にグリコシル化されていない。しかしペプチ
ドをグリコシル化することができる細菌系は明らかになりつつあり、したがって将来はグ
リコシル化された組換えペプチドを細菌で生産することができるかもしれない。

多数の細菌発現系が当該技術分野では知られている。好適な細菌種には限定するわけで
はないが大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）およびバチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）種を含む。

大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）での組換えペプチドの発現は当該技術分野では周知である。大
腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）に基づく発現系に関するプロトコールは、とりわけ米国特許出願第
２００２００６４８３５号明細書、米国特許第６，２４５，５３９号、同第５，６０６，
０３１号、同第５，４２０，０２７号、同第５，１５１，５１１号明細書およびＲＥ３３
，６５３号明細書に見いだされる。細菌を形質転換するための方法には限定するわけでは
ないが、塩化カルシウム（Ｃｏｈｅｎ ｅｔ ａｌ．，１９７２，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．
Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，６９：２１１０−２１１４；Ｈａｎａｈａｎ，１９８３，
Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１６６：５５７−５８０；Ｍａｎｄｅｌ ａｎｄ Ｈｉｇａ，１
９７０，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．５３：１５９−１６２）および電気穿孔（Ｓｈｉｇｅｋ
ａｗａ ａｎｄ Ｄｏｗｅｒ，１９８８，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ６：７４２−７
５１）、およびＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，２００１（同上）に記載されているも
のを含む。微生物の形質転換および発現系に関する実験室用のプロトコールの総説は、Ｓ
ａｕｎｄｅｒｓ ａｎｄ Ｓａｕｎｄｅｒｓ（１９８７、バイオテクノロジーに応用され
る微生物遺伝学：遺伝子転移および操作の原理および技法（Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｇｅｎ
ｅｔｉｃｓ Ａｐｐｌｉｅｄ ｔｏ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｐｒｉｎｃｉｐａｌ
ｅｓ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｏｆ Ｇｅｎｅ Ｔｒａｎｓｆｅｒ ａｎｄ Ｍ
ａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ）、クルーム ヘルム、ロンドン）、Ｐｕａｈｌｅｒ（１９９３
、微生物の遺伝子工学（Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｏ
ｒｇａｎｉｓｍ）、ヴァインヘイム、ニューヨーク）、Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，（１９９
９、代謝工学（Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ）、マルセルデッカー、ニ
ューヨーク）、Ａｄｏｌｐｈ（１９９６、微生物のゲノム法（Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｇｅ
ｎｏｍｅ Ｍｅｔｈｏｄｓ）、ＣＲＣ出版、ボカ ラトン）、およびＢｉｒｒｅｎ ａｎ
ｄ Ｌａｉ（１９９６、非哺乳動物ゲノム分析：実践的指針（Ｎｏｎｍａｍｍａｌｉａｎ
Ｇｅｎｏｍｉｃ Ａｎａｌｙｓｉｓ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ）、アカデ
ミック出版、サンディエゴ）を参照にされたい。

大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）でのペプチドの発現に関する技術文献の一般的総説については
、Ｂａｌｂａｓ（２００１，Ｍｏｌ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１９：２５１−２６７）を
参照にされたい。今では数社が大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）のＲｏｓｅｔｔａ（商標）株のよ
うな哺乳動物ペプチドの発現系のために選択された細菌株を提供している（ノバジェン社
、マジソン、ウィスコンシン州；細菌細胞で通常使用されていない真核コドンの強化され
た発現、および強化されたジスルフィド結合の形成を含む）。
Ｈ．細胞工学
本開示から、細胞により生産される出発原料が均一なほど、より効率的に所望のグリコ
シル化を有する大量のペプチドがインビトロで生成されることは明白である。すなわち本
明細書で開示するインビトロの酵素的反応の出発原料として、均一にグリコシル化された
ペプチドを生産するための宿主細胞の遺伝子工学は、ヘテロロガスな組のグリカン構造を
結合して有するペプチド出発原料を使用することよりも有意な利点を提供する。本発明で
使用するために好適な１つのペプチド出発原料は、基本的なトリマンノシルコア構造のみ
からなる１次グリカン分子を有するペプチドである。別の好適な出発原料はＭａｎ３Ｇｌ
ｃＮＡｃ４である。改造方法の後、好適なペプチドは所望のグリコシル化、すなわち改善
された臨床的効力を有する最大量のペプチドを生じるようになる。しかし他のグリカン出
発原料も、例えば高マンノースグリカンは一連のマンノシダーゼを使用してインビトロで
基本的なトリマンノシルコア構造に容易に減少されるので、本明細書に記載する方法での
使用に適する。本明細書のいたるところに記載するように、基本的なトリマンノシルコア
構造またはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４が生成されるようにすべての過剰な糖部分が開裂可能
であるならば、他のグリカン出発原料も使用することができる。このように本発明のペプ
チドを生産するために、遺伝的に工作した細胞を使用する目的は、出来る限り均一なグリ
カン構造を結合して有するペプチドを生成することであり、ここでグリカン構造はインビ
トロで改造されて所望のグリコシル化を有するペプチドを生成することができる。これに
よりこのようなペプチドの生産コストに劇的な減少をもたらす。この方法を使用して生産
された糖ペプチドは、大部分が同じＮ−結合グリカン構造を有するので、生産後修飾プロ
トコールはバッチ毎の一貫性がより高い最終産物を生成するために標準化し、そして至適
化することができる。結果として、最終的に完成された−鎖（ｃｈａｉｎ）生成物は、現
在入手可能なものよりも異質性が低くなり得る。この生成物は従来技術の生成物よりも改
善された生物学的半減期および生物学活性を有する。あるいは所望により本発明は、例え
ば異なる糖部分の付加をもたらす反応条件を選択することにより、限定され、そして特異
的な異質性を導入するために使用することができる。

好ましくは厳しい要件ではないが、遺伝的に工作した細胞は主に基本的なトリマンノシ
ルコア構造またはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４からなるグリカン構造を有するペプチドを生産
する細胞である。最少限、遺伝的に工作された細胞により生産されるこれらの好適な構造
の比率は、改造プロトコールの後に望ましいグリコシル化を有するペプチドを生じるため
に十分でなければならない。

一般に任意の真核細胞型を修飾して本発明の宿主細胞とすることができる。基本的なト
リマンノシルコア糖ペプチドまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４糖ペプチドの生産をもたらす
酵素活性の適切な付加／削除を同定するために、最初に微生物により生産される内因性お
よび組換え糖ペプチドの両方のグリコシル化パターンを決定する。これは典型的にはグリ
コシルトランスフェラーゼ反応の基質としてトリマンノシル糖ペプチドを使用する酵素活
性の削除、およびより短い鎖を生成するためにより複雑なＮ−結合グリカンを分解する酵
素活性の挿入を伴う。さらに遺伝的に工作された細胞は高マンノースグリカンを生成する
ことができ、これはマンノシダーゼにより開裂されて所望の出発グリカン構造を生成する
ことができる。マンノシダーゼは細胞中、インビボで活性であることができ（すなわち、
細胞はそれらを生産するように遺伝的に工作することができる）、あるいはそれらは生産
後の反応にインビトロで使用することができる。

発現したペプチドのグリコシル化プロフィールを改変するために、遺伝的に修飾した宿
主細胞に関する技法は周知である。例えばAltmann et al. (1999, Glycoconjugate J. 16
:109-123), Ailor et al. (2000, Glycobiology 10(8): 837-847), Jarvis et al., (In
vitrogen Conference, March, 1999, abstract), Hollister and Jarvis, (2001, Glycob
iology 11(1): 1-9), and Palacpac et al., (1999, PNAS USA 96: 4697), Jarvis et al
., (1998. Curr. Opin. Biotechnol. 9:528-533), Gerngross（米国特許出願２００２０
１３７１３４第号明細書）を参照にされたい、これらすべてが昆虫または植物細胞をグリ
コシルトランスフェラーゼ遺伝子でトランスフェクションすることにより、昆虫または植
物発現系を「哺乳動物化する（ｍａｍｍａｌｉａｎｉｚｅ）」ための技術を開示する。

大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で発現したペプチドのグリコシル化プロフィールを遺伝的に改
変する技法も存在する。大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）は、インビボでオリゴ糖を生産するよう
に、細菌である髄膜炎菌（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）およびアゾ
リゾビウム（Ａｚｏｒｈｉｚｏｂｉｕｍ）に由来する種々のグリコシルトランスフェラー
ゼで工作された（Ｂｅｔｔｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊ．Ｊ．
１６：２０５−２１２）。髄膜炎菌（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）
のβ１，３ＮアセチルグルコサミニルトランスフェラーゼｌｇｔＡ遺伝子を過剰に発現す
るように遺伝的に工作された大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）は、外因性ラクトースを効率的にグ
リコシル化する（Ｐｒｉｅｍ ｅｔ ａｌ．，２００２，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ １
２：２３５−２４０）。

真菌細胞も遺伝的に修飾されて外因性のグリコシルトランスフェラーゼを生産した（Ｙ
ｏｓｈｉｄａ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ，９（１）；５３−
５８；Ｋａｌｓｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９９５，Ｇｌｙｃｏｃｏｎｊ．Ｊ．１２：３６
０−３７０；Ｓｃｈｗｉｅｎｔｅｋ ａｎｄ Ｅｒｎｓｔ，１９９４，Ｇｅｎｅ １４５
（２）：２９９−３０３；Ｃｈｉｂａ ｅｔ ａｌ．，１９９５，Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｊ，
３０８：４０５−４０９）。

このように１つの観点では、本発明は細胞により生産される糖ペプチドの比率が基本的
なトリマンノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するように、糖ペプチド群
をグリコシル化する細胞を提供する。好ましくは細胞は基本的なトリマンノシルコアのみ
からなるグリカン構造を有するペプチドを生産する。最少限、基本的なトリマンノシルコ
アまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を有するペプチドの比率は、改造方法後に所望のグ
リコシル化を有するペプチドを生じるために十分である。細胞は１以上のヘテロロガスな
核酸発現単位を導入され、その各々は１以上の問題のペプチドをコードする１以上の核酸
配列を含んでなることができる。問題の糖ペプチドの天然な形態は、１以上の複雑なＮ−
結合グリカンを含んでなることができ、あるいは単に高マンノースグリカンであり得る。

細胞は任意の型の細胞でよく、そして好ましくは真核細胞である。この細胞はヒト、マ
ウス、ラット、ウサギ、ハムスターのような哺乳動物細胞または他の型の哺乳動物細胞で
よい。細胞が哺乳動物細胞である時、哺乳動物細胞は非−ヒトトランスジェニック哺乳動
物に由来するか、またはその中に含まれ、ここで哺乳動物中の細胞は、所望の糖ペプチド
分子の生産に必要な所望の糖ペプチドおよび種々のグリコシル化およびグリコシダーゼ酵
素をコードする。加えて細胞は真菌細胞、好ましくは酵母細胞でよく、あるいは細胞は昆
虫または植物細胞でよい。同様に細胞が植物細胞である時、植物細胞はトランスジェニッ
ク植物に由来するか、またはその中に含まれ、ここで植物は所望の糖ペプチド分子の生産
に必要な所望の糖ペプチドおよび種々のグリコシル化およびグリコシダーゼ酵素をコード
する。

いくつかの態様では、宿主細胞は１以上のヘテロロガスなグリコシルトランスフェラー
ゼ酵素および／または１以上のヘテロロガスなグリコシダーゼ酵素を発現する真核細胞で
よく、ここで宿主細胞中での組換え糖ペプチドの発現は、１次グリカン構造としてペプチ
ドに結合した基本的なトリマンノシルコアを有する組換え糖ペプチドの生産をもたらす。

いくつかの態様では、細胞中で有用なヘテロロガスなグリコシルトランスフェラーゼ酵
素は、例えばＴａｎｉｇｕｃｈｉ ｅｔ ａｌ．（２００２，グリコシルトランスフェラ
ーゼおよび関連遺伝子のハンドブック、スプリンガー、ニューヨーク）で利用可能なグリ
コシルトランスフェラーゼのリストに含まれる既知のグリコシルトランスフェラーゼ酵素
からなる群から選択することができる。

別の態様では、ヘテロロガスなグリコシラーゼ酵素はマンノシダーゼ１、マンノシダー
ゼ２、マンノシダーゼ３および限定するわけではないが微生物のマンノシダーゼを含む他
のマンノシダーゼからなる群から選択することができる。本発明の方法に有用な酵素に関
するさらなる開示は、本明細書のいたるところに提供している。

さらに別の態様では、宿主細胞は真核細胞でよく、ここで１以上の内因性グリコシルト
ランスフェラーゼ酵素および／または１以上の内因性グリコシダーゼ酵素は、宿主細胞で
の組換え糖ペプチドの発現が１次グリカン構造として結合した基本的なトリマンノシルコ
アを有する組換え糖ペプチドの生産をもたらすように不活性化されている。

さらなる態様では、宿主細胞はヘテロロガスなグリコシルトランスフェラーゼ酵素およ
び／またはグリコシダーゼ酵素を発現することができると同時に、１以上の内因性グリコ
シルトランスフェラーゼ酵素および／またはグリコシダーゼ酵素が不活性化されている。
内因性グリコシルトランスフェラーゼ酵素および／またはグリコシダーゼ酵素は、限定す
るわけではないがアンチセンス技法および核酸を宿主細胞のゲノムに挿入することが関与
する技法を含む当業者に既知の技法を使用して不活性化することができる。幾つかの態様
では、内因性酵素はＧｎＴ−Ｉからなる群から選択することができ、マンノシダーゼ、キ
シロシルトランスフェラーゼ、コアα１，３フコシルトランスフェラーゼ、セリン／トレ
オニンＯ−マンノシルトランスフェラーゼ等の選択であることができる。

あるいは、Ｎ−結合グリカンが主にトリマンノシルコア型またはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ
４型となるように、天然にペプチドをグリコシル化する発現系を利用することができる。
トリマンノシルコアを生産する細胞型の例は、Ｓｆ９細胞である。他のそのような発現系
は、天然にまたは組換え的に細胞で発現した糖ペプチドを分析し、所望のグリコシル化特
性を現す糖ペプチドを選択することにより同定することができる。本発明は、本発明のペ
プチドを生産するためにありとあらゆるそのような細胞を含むと解釈すべきである。
Ｖ．改造されたグリカンおよび／または複合糖質化ペプチドの精製
修飾された糖タンパク質が細胞内で生産され、または分泌される場合、第１工程として
特定の屑、宿主細胞、分解したフラグメントを、例えば遠心または超遠心により除去し；
場合によりタンパク質は市販されているタンパク質濃縮フィルターを用いて濃縮すること
ができ、続いてペプチド変異体はイムノアフィニティークロマトグラフィー、イオン交換
カラム分画（例えばジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）またはカルボキシメチルもしくは
スルホプロピル基を含むマトリックス）、Ｂｌｕｅ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ、ＣＭ Ｂｌｕ
ｅ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ、ＭＯＮＯ−Ｑ、ＭＯＮＯ−Ｓ、レンチルレクチン−Ｓｅｐｈａ
ｒｏｓｅ、ＷＧＡ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ、ＣｏｎＡ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ、Ｅｔｈｅｒ
Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ、Ｂｕｔｙｌ Ｔｏｙｏｐｅａｒｌ、Ｐｈｅｎｙｌ Ｔｏｙｏｐｅａ
ｒｌまたはプロテインＡ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅでのカラムクロマトグラフィー、ＳＤＳ−
ＰＡＧＥ−クロマトグラフィー、シリカクロマトグラフィー、クロマトフォーカシング、
逆相ＨＰＬＣ（ＲＰ−ＨＰＬＣ）、ゲル濾過（例えばＳｅｐｈａｄｅｘ分子篩またはサイ
ズ−排除クロマトグラフィー）、ペプチドを選択的に結合するカラムでのクロマトグラフ
ィー、およびエタノール、ｐＨまたは硫酸アンモニウム沈殿、膜濾過および種々の技法か
ら選択される１以上の工程により他の不純物から分離することができる。

培養で生産された修飾ペプチドは通常、細胞、酵素等からの初期の抽出、続いて１以上
の濃縮、塩析、水性イオン−交換またはサイズ−排除クロマトグラフィー工程により単離
される。さらに修飾糖タンパク質はアフィニティークロマトグラフィーにより精製するこ
とができる。次いで最終精製工程にＨＰＬＣを使用することができる。

タンパク質分解を阻害するためにプロテアーゼインヒビター、例えばフェニルメチルス
ルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）を前述の任意工程に含めることができ、そして偶発的な
混入物の成長を防止するために抗生物質を含めることができる。

別の態様では、本発明の修飾ペプチドを生産する系からの上清を、最初に市販されてい
るタンパク質濃縮フィルター、例えばアミコン（Ａｍｉｃｏｎ）またはミリポアペリコン
（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｐｅｌｌｉｃｏｎ）超遠心ユニットを使用して濃縮する。濃縮工
程後、濃縮物を適当な精製マトリックスに乗せる。例えば適当なアフィニティーマトリッ
クスは適当な支持体に結合したペプチド用のリガンド、レクチンまたは抗体分子を含んで
なることができる。あるいはアニオン−交換樹脂、例えばペンダントＤＥＡＥ基を有する
マトリックスまたは支持体を使用することができる。適当なマトリックスにはアクリルア
ミド、アガロース、デキストラン、セルロースまたはタンパク質精製に一般的に使用され
ている他の種類のものを含む。あるいはカチオン−交換工程を使用してもよい。適当なカ
チオン交換体には、スルホプロピルまたはカルボキシメチル基を含んでなる種々の不溶性
マトリックスを含む。スルホプロピル基が特に好適である。

次いで疎水性のＲＰ−ＨＰＬＣ媒体、例えばペンダントメチルまたは他の脂肪族基を有
するシリカゲルを使用した１以上のＲＰ−ＨＰＬＣ工程を使用してさらにペプチド変異体
組成物を精製することができる。前述の精製工程の幾つかまたは全ては、種々に組み合わ
せて使用して均一な修飾糖タンパク質を提供することもできる。

大規模な発酵から得られた本発明の修飾ペプチドは、Ｕｒｄａｌ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．
Ｃｈｒｏｍａｔｏｇ．２９６：１７１（１９８４）により開示された方法に類似する方法
により精製することができる。この参考文献は調製用ＨＰＬＣカラムで組換えヒトＩＬ−
２を精製するために、２つの順次のＲＰ−ＨＰＬＣ工程を記載する。あるいはアフィニテ
ィークロマトグラフィーのような技法を使用して修飾糖タンパク質を精製することができ
る。
ＶＩ．好適なペプチドおよび好適なペプチドをコードする核酸
本発明は種々のペプチドおよびタンパク質、および同様な分子またはそれらのフラグメ
ントをコードする単離された核酸を含む。そのようなペプチドには限定するわけではない
が、ヒト顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、ヒトインターフェロンアルファ（ＩＦ
Ｎ−アルファ）、ヒトインターフェロンベータ（ＩＦＮ−ベータ）、ヒト第ＶＩＩ因子（
第ＶＩＩ因子）、ヒト第ＩＸ因子（第ＩＸ因子）、ヒト濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、ヒ
トエリトロポエチン（ＥＰＯ）、ヒト顆粒球／マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−
ＣＳＦ）、ヒトインターフェロンガンマ（ＩＦＮ−ガンマ）、ヒト−アルファ−１プロテ
アーゼインヒビター（アルファ−１アンチトリプシンまたはアルファ−１−トリプシンイ
ンヒビター、Ａ−１−Ｐ１としても知られている）、グルコセレブロシダーゼ、ヒト組織
型アクチベーター（ＴＰＡ）、ヒトインターロイキン−２（ＩＬ−２）、ヒト第ＶＩＩＩ
因子（第ＶＩＩＩ因子）、ヒトＩｇＧ免疫グロブリンＦｃ部分に融合した７５ｋＤａ腫瘍
壊死因子レセプター（ＥＮＢＲＥＬ（商標）またはＥＴＡＮＥＲＣＥＰＴ（商標）（キメ
ラＴＮＦＲ）として商業的に知られている）、ヒトウロキナーゼ（ウロキナーゼ）、糖タ
ンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａおよびビトロネクチンアルファ_ｖベータ_３レセプターに特異的
に結合するヒト／マウスキメラモノクローナル抗体のＦａｂフラグメント（ＲＥＯＰＲＯ
（商標）またはＡＢＣＩＸＩＭＡＢ（キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ）として
商業的に知られている）、ヒトＨＥＲ２に特異的に結合するマウス／ヒトキメラモノクロ
ーナル抗体（ＨＥＲＣＥＰＴＩＮ（商標）（キメラ抗−ＨＥＲ２）として商業的に知られ
ている）、呼吸合胞体ウイルスのＡ抗原部位またはＦタンパク質に特異的に結合するヒト
／マウスキメラ抗体（ＳＹＮＡＧＩＳ（商標）またはＰＡＬＩＶＩＺＵＭＡＢ（キメラ抗
−ＲＳＶ）として商業的に知られている）、ヒトＢ−細胞上のＣＤ２０に特異的に結合す
るキメラヒト／マウスモノクローナル抗体（ＲＩＴＵＸＡＮ（商標）またはＲＩＴＵＸＡ
ＭＡＢ（商標）（キメラ抗−ＣＤ２０）として商業的に知られている）、ヒト組換えＤＮ
ａｓｅ（ＤＮａｓｅ）、ヒト腫瘍壊死因子に特異的に結合するキメラヒト／マウスモノク
ローナル抗体（ＲＥＭＩＣＡＤＥ（商標）またはＩＮＦＬＩＸＩＭＡＢ（キメラ抗−ＴＮ
Ｆ）として商業的に知られている）、ヒトインスリン、Ｂ型肝炎ウイルスの表面抗原（ａ
ｄｗサブタイプ；ＨＢｓＡｇ）、およびヒト成長ホルモン（ＨＧＨ）等を含む。

本発明の単離された核酸は、本発明で上に確認した任意のペプチド、およびそれらの任
意の修飾された形態（ヌクレオチド配列が無細胞である時、または細胞に付随する時、ヌ
クレオチド配列をより安定にするＤＮＡまたはＲＮＡの化学的修飾を含む）をコードする
ＲＮＡまたはＤＮＡ配列を含むと解釈するべきである。非限定的な例として、少なくとも
１つのホスホロチオエート修飾を含むオリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドにヌク
レアーゼに対して強化された耐性を付与することが知られている。修飾オリゴヌクレオチ
ドの具体例には、ホスホロチオエート、ホスホトリエステル、メチルホスホネート、短鎖
アルキルもしくはシクロアルキル糖間結合、または短鎖ヘテロ原子もしくはヘテロ環式糖
間（「骨格」）結合を含むものを含む。さらにモルホリノ骨格構造（米国特許第５，０３
４，５０６号明細書）またはポリアミド骨格構造（Ｎｉｅｌｓｅｎ ｅｔ ａｌ．，１９
９１，Ｓｃｉｅｎｃｅ２５４：１４９７）を有するオリゴヌクレオチドも使用することが
できる。

ヌクレオチドの化学修飾を使用して、細胞によるヌクレオチド配列の取り込み効率、ま
たは細胞でヌクレオチド配列が発現される効率を強化することもできる。ヌクレオチド配
列の修飾のありとあらゆる組み合わせが本発明では企図されている。

本発明は本明細書に開示する核酸およびアミノ酸配列のみに限定されると解釈されるべ
きではない。本明細書のいたるところにより詳細に記載するように、いったん本発明を着
手すれば、当業者には本発明のペプチドをコードする他の核酸が本明細書に記載する手順
（例えば部位指向的突然変異誘発法、フレイムシフト突然変異等）、および当該技術分野
で周知の手順に従うことにより得られるのは明らかである
またペプチドのフラグメントをコードする単離された核酸も含み、ここでペプチドのフ
ラグメントはペプチドの所望する生物学的活性を保持している。さらに好適なペプチドを
コードする核酸の例を具体的な配列番号と関連して本明細書に開示するが、本発明は本明
細書に開示する具体的な核酸には限定されることは全くないと解釈すべきである。むしろ
本発明は核酸が本明細書に開示する所望の生物学的活性を有するペプチドをコードするよ
うに、本明細書に開示する配列と十分な同一性の割合を有するありとあらゆる核酸分子を
含むと解釈するべきである。また完全長よりも短い単離された核酸も意図し、ここでそれ
によりコードされるペプチドの生物学的活性は保持されている。１つの核酸ともう１つの
核酸との間の同一性の割合を決定する方法は、任意の特に好適なペプチドの生物学的活性
を決定するためのアッセイとして本明細書のいたるところに開示する。

また本明細書のいたるところに開示するように、例えばＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ
．、（１９８９、モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドス
プリングハーバーラボラトリー出版、ニューヨーク）およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ
．（１９９７、分子生物学の現在のプロトコール、グリーン＆ウィリー、ニューヨーク）
のような当該技術分野で周知な組換えＤＮＡ法を使用して、本発明のペプチドの誘導体、
突然変異体または変異体を生成するための多数の他の手順を使用することができる。ペプ
チドをコードするＤＮＡ配列を改変することによりペプチドまたはポリペプチド中にアミ
ノ酸の変化を導入するための手順は当該技術分野では周知であり、そしてＳａｍｂｒｏｏ
ｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９、同上）；Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９９７、同上
）にも記載されている。

本発明は、Ｇ−ＣＳＦ、ＩＦＮ−アルファ、ＩＦＮ−ベータ、第ＶＩＩ因子、第ＩＸ因
子、ＦＳＨ、ＥＰＯ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＦＮ−ガンマ、Ａ−１−Ｐ１、グルコセレブロシ
ダーゼ、ＴＰＡ、ＩＬ−２、第ＶＩＩＩ因子、キメラＴＮＦＲ、ウロキナーゼ、キメラ抗
−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩａ、キメラ−抗−ＨＥＲ２、キメラ抗−ＲＳＶ、キメラ抗−
ＣＤ２０、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−ＴＮＦ、ヒトインスリン、ＨＢｓＡｇおよびＨＧＨを
コードする核酸を含み、ここで標識ペプチドをコードする核酸はそれに共有結合している
。すなわち本発明は、標識ペプチドをコードする核酸配列が本発明のペプチドをコードす
る核酸に共有結合しているキメラ核酸を包含する。そのような標識ペプチドは当該技術分
野では周知であり、そして例えばグリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ｍｙｃ、ｍｙｃ−
ピルベートキナーゼ（ｍｙｃ−ＰＫ）、Ｈｉｓ_６、マルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）
、インフルエンザウイルス赤血球凝集素標識ポリペプチド、フラッグ標識ポリペプチド（
ＦＬＡＧ）、およびグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）標識ポリペプチド
を含む。しかし本発明は上記に掲載した標識ペプチドをコードする核酸に限定すべきもの
とは全く解釈されない。むしろこれらの標識ペプチドに実質的に類似する様式で機能する
ことができるペプチドをコードする任意の核酸配列を、本発明に含むと解釈すべきである
。

標識ペプチドをコードする核酸を含んでなる核酸は、本発明のペプチドを細胞、組織内
に、および／または生物全体（例えば哺乳動物の胚）に局在させ、細胞から分泌された本
発明のペプチドを検出し、そして細胞中でのペプチドの役割（１つまたは複数）を研究す
るために使用することができる。さらに標識ペプチドの付加により「標識」されたペプチ
ドの単離および精製が容易になるので、本発明のペプチドが生産され、そして容易に精製
され得る。

本発明は以下の好適な単離ペプチドを含む：Ｇ−ＣＳＦ、ＩＦＮ−アルファ、ＩＦＮ−
ベータ、第ＶＩＩ因子、第ＩＸ因子、ＦＳＨ、ＥＰＯ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＦＮ−ガンマ、
Ａ−１−Ｐ１、グルコセレブロシダーゼ、ＴＰＡ、ＩＬ−２、第ＶＩＩＩ因子、キメラＴ
ＮＦＲ、ウロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ、キメラ−抗−ＨＥＲ
２、キメラ抗−ＲＳＶ、キメラ抗−ＣＤ２０、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−ＴＮＦ、ヒトイン
スリン、ＨＢｓＡｇおよびＨＧＨ。

本発明は本発明のペプチド（またはそれをコードするＤＮＡ）の「誘導体」、「突然変
異体」および「変異体」を包含すると解釈され、この誘導体、突然変異体および変異体は
１以上のアミノ酸が改変されている（またはそれをコードするヌクレオチド配列を指す時
は、１以上の塩基対が改変されている）ので、生成するペプチド（またはＤＮＡ）は本明
細書に引用する配列とは同一ではないが、そのペプチドがＧ−ＣＳＦ、ＩＦＮ−アルファ
、ＩＦＮ−ベータ、第ＶＩＩ因子、第ＩＸ因子、ＦＳＨ、ＥＰＯ、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＦＮ
−ガンマ、Ａ−１−Ｐ１、グルコセレブロシダーゼ、ＴＰＡ、ＩＬ−２、第ＶＩＩＩ因子
、キメラＴＮＦＲ、ウロキナーゼ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ、キメラ−
抗−ＨＥＲ２、キメラ抗−ＲＳＶ、キメラ抗−ＣＤ２０、ＤＮａｓｅ、キメラ抗−ＴＮＦ
、ヒトインスリン、ＨＢｓＡｇおよびＨＧＨの生物学的／生化学的特性を有するという点
で本明細書に開示するペプチドと同じ生物学的特性を有する。

さらにペプチドの長さに関係なく、望ましいペプチドの生物学的活性を保持するペプチ
ドのフラグメントを含む。本発明に有用な任意のペプチドの完全長形態よりも小さいもの
を単離し、そして本明細書に提供するアッセイを使用して単離したどのフラグメントが所
望の生物学的活性を保持するか、したがって本発明に有用なペプチドであるかを決定する
ことは当業者の技術範囲内である。

本発明のタンパク質の生物学的特性は、炎症の減少、免疫応答の顕在化、血液凝固、造
血産出力の上昇、プロテアーゼ阻害、免疫系の調節、抗原の結合、成長、疾患の処置の軽
減、ＤＮＡ開裂等のような、限定するわけではなく含む本明細書に記載する生物学的アッ
セイおよび環境においてペプチドが機能する能力を含むと解釈されるべきである。
Ａ．Ｇ−ＣＳＦ
本発明はＧ−ＣＳＦ上のグリカン構造を修飾する方法を包含する。Ｇ−ＣＳＦは活性化
Ｔ−細胞、マクロファージ、内皮細胞およびストロマの繊維芽細胞により生産されるサイ
トカインとして当該技術分野では周知である。Ｇ−ＣＳＦは主に骨髄に作用して炎症性白
血球の生産を増加し、そしてさらに内分泌ホルモンとして機能して炎症機能中に消費され
る好中球の補充を開始する。またＧ−ＣＳＦは化学療法後の骨髄代用に臨床的応用を有す
る。

Ｇ−ＣＳＦは哺乳動物、特にヒトにおける治療的応用に重要でしかも有用な化合物であ
ると示されてきたが、組換え細胞からＧ−ＣＳＦを生産するための現在の方法は、比較的
短い生物学的寿命、免疫原性を導く可能性がある不適切なグリコシル化パターン、機能の
損失を有する生成物、および同じ効果を達成するためにより大量およびより頻繁な投与の
両方の必要性の増加をもたらす。

Ｇ−ＣＳＦは単離そしてクローン化され、その核酸およびアミノ酸配列はそれぞれ配列
番号１および配列番号２（それぞれ図５２Ａおよび５２Ｂ）に示す。本発明はＧ−ＣＳＦ
を、特に有力かつ機能的な生物学的分子として機能するＧ−ＣＳＦの能力に関係するよう
に飾する方法を包含する。当業者は本開示および本明細書の教示をもってすれば、本発明
がＧ−ＣＳＦを修飾するための組成物および方法を提供することを容易に理解するだろう
。

本発明はさらに当該技術分野で周知なＧ−ＣＳＦ変異体を包含する。例として、しかし
本発明を限定することは全く意味せずに、Ｇ−ＣＳＦ変異体はすでに米国特許第６，１６
６，１８３号明細書に記載され、ここでＧ−ＣＳＦはリシン残基の天然な補体を含んでな
り、そしてさらに１または２個のポリエチレングリコール分子に結合したものが記載され
ている。さらに米国特許第６，００４，５４８号、同第５，５８０，７５５号、同第５，
５８２，８２３号および同第５，６７６，９４１号明細書は、１以上のシステイン残基が
１７、３６、４２、６４および７４位でアラニンあるいはセリンに置き換えられたＧ−Ｃ
ＳＦ変異体を記載する。米国特許第５，４１６，１９５号明細書は、１７位のシステイン
、２７位のアスパラギン酸、および６５および６６位のセリンがそれぞれセリン、セリン
、プロリンおよびプロリンに置き換えられたＧ−ＣＳＦ分子を記載する。別の変異体は当
該技術分野で周知であり、そして例えば米国特許第５，３９９，３４５号明細書に記載さ
れている。

本発明の修飾されたＧ−ＣＳＦ分子の発現および活性は、当該技術分野で周知な、そし
て例えば米国特許第４，８１０，６４３号明細書に記載されているような方法を使用して
アッセイすることができる。例として活性は放射能−標識チミジンの取り込みアッセイを
使用して測定することができる。簡単に説明すると、健康なドナーに由来するヒトの骨髄
をＦｉｃｏｌｌ−Ｈｙｐａｑｕｅでの密度カットに供し（１．０７７ｇ／ｍｌ、ファルマ
シア（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）、ピスカタウェイ、ニュージャージー州）、そして低密度細
胞を、１０％ウシ胎児血清、グルタミンおよび抗生物質を含むＩｓｃｏｖｅの培地（ギブ
コ（ＧＩＢＣＯ）、ラジョラ、カリフォルニア州）に懸濁する。約２Ｘ１０^４個のヒト骨
髄細胞を対照培地またはＧ−ＣＳＦまたは本発明のいずれかと、９６−ウェル平底プレー
ト中で約３７℃で空気中５％ＣＯ_２で約２日間、インキューベーションする。次いでカル
チャーは約４時間、０．５μＣｉ／ウェルの^３Ｈ−チミジン（ニューイングランドヌクレ
アー（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｎｕｃｌｅａｒ）、ボストン、マサチューセッツ州）で
パルスをかけ、そして取り込みを例えばＶｅｎｔｕａ，ｅｔ ａｌ．（１９８３，Ｂｌｏ
ｏｄ ６１：７８１）に記載されているように測定する。対照化合物で処理した骨髄細胞
と比べて、^３Ｈ−チミジンのヒト骨髄細胞への包含の上昇は、活性なそして能力のあるＧ
−ＣＳＦ化合物の指標である。
Ｂ．ＩＦＮアルファおよびＩＦＮベータ
本発明はさらに、ＩＦＮアルファおよびＩＦＮベータの改造および修飾法を包含する。
ＩＦＮアルファは重量が約１８ｋＤａの約２０個のペプチドのファミリーの一部である。
ＩＦＮアルファおよびＩＦＮベータは集合的にＩ型インターフェロンとして知られるが、
同じ細胞レセプターに結合し、そして類似の応答を誘導する。Ｉ型ＩＦＮは中でも、ウイ
ルス複製を阻害し、ＮＫ細胞の溶解能力を上げ、ＭＨＣ分子の発現を調節し、そして細胞
増殖を阻害する。Ｉ型ＩＦＮはウイルス感染、特に肝炎ウイルスの治療として、および多
発性硬化症の治療として使用されてきた。

Ｉ型ＩＦＮの現在の組成物は上記のように、異型の免疫学的応答の調節、および種々の
疾患の治療の両方に有用な化合物である。しかしそれらは天然なグリコシル化の補体を含
んでなる天然なサイトカインと比べて、体内での能力および機能の低下、および限定され
た半減期により阻まれている。

ＩＦＮアルファの原型ヌクレオチドおよびアミノ酸配列は、本明細書ではそれぞれ配列
番号３および配列番号４（それぞれ図５３Ａおよび５３Ｂ）として説明する。ＩＦＮベー
タは約２０ｋＤａの単一の遺伝子産物を含んでなり、その核酸およびアミノ酸配列は、本
明細書では配列番号５および配列番号６（それぞれ図５４Ａおよび５４３Ｂ）として表す
。本発明は本明細書のヌクレオチドおよびアミノ酸配列に限定されない。当業者はＩＦＮ
アルファの多くの変異体が天然な、および工作された誘導体として両方が存在すると容易
に考えるだろう。同様に、ＩＦＮベータはより有利な治療的プロフィールを達成すること
を試みるために修飾された。修飾されたＩ型ＩＦＮの例は当該技術分野では周知であり（
表８を参照にされたい）、そして例えば米国特許第６，３２３，００６号明細書（ここで
システイン−６０がチロンシに置換されている）、米国特許第４，７３７，４６２号、同
第４、５８８，５８５号、同第５，５４５，７２３号および同第６，１２７，３３２号明
細書（ここで種々のアミノ酸の置換を持つＩＦＮベータが記載されている）に記載されて
いる。さらに米国特許第４，９６６，８４３号、同第５，３７６，５６７号、同第５，７
９５，７７９号明細書は、ＩＦＮアルファ−６１およびＩＦＮ−アルファ−７６を記載す
る。米国特許第４，７４８，２３３号および同第４，６９５，５４３号明細書は、ＩＦＮ
アルファｇｘ−１を記載し、一方米国特許第４，９７５，２７６号明細書はＩＦＮアルフ
ァ５４を記載する。米国特許第４，６９５，６２３号、同第４，８９７，４７１号、同第
５，６６１，００９号および同第５，５４１，２９３号明細書はすべて共通ＩＦＮアルフ
ァ配列を記載し、提出日までに知られているすべての変異体を表す。このＩ型ＩＦＮおよ
びその変異体のリストは網羅的であること全く意味せず、当業者は本発明が既知の、また
は将来見いだされるＩＦＮベータおよびＩＦＮアルファ分子、誘導体および変異体を包含
すると容易に理解するだろう。

組換え細胞中のＩＦＮの発現法は周知であり、そして例えば米国特許第４，９６６，８
４３号明細書およびＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（２００１、モレキュラークローニ
ング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバーラボラトリー出版、ニ
ューヨーク）およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９９７、分子生物学の現在のプロ
トコール、グリーン＆ウィリー、ニューヨーク）に記載されている技法を使用して容易に
行われる。

本発明の方法により修飾されたＩ型ＩＦＮの生物学的活性を測定するアッセイは、当業
者には周知である。例えばＲｕｂｉｎｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９８１，Ｊｏｕｒ
ｎａｌ ｏｆ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ３７：７５５−７５８）に記載されているアッセイは
、細胞群に及ぼすウイルス感染の細胞病理学効果を測定することにより、Ｉ型ＩＦＮの効
果を決定するために一般的に使用されている。この方法はＩＦＮ型の生物学的機能をアッ
セイするために当該技術分野で知られている多くの１つにすぎない。
Ｃ．第ＶＩＩａ因子
さらに本発明は第ＶＩＩ因子の改造および修飾法を包含する。血液凝固経路は、多くの
出来事（ｅｖｅｎｔ）を含んでなる複雑な反応である。この経路の中間の出来事が第ＶＩ
Ｉ因子であり、これは組織因子およびカルシウムイオンの存在下で第Ｘ因子をＸａ因子に
転換することにより（第ＶＩＩａ因子への活性化で）、血液凝固の外因系経路に参加する
プロ酵素である。次に第Ｘａ因子は、第Ｖａ因子、カルシウムイオンおよびリン脂質の存
在下でプロトロンビンをトロンビンに転換する。第Ｘ因子から第Ｘａ因子への活性化は、
内因系および外因系の血液凝固経路の両方により分けられる（ｓｈａｒｅｄ）出来事であ
り、したがって第ＶＩＩａ因子は第ＶＩＩＩ因子の欠損またはインヒビターを有する患者
の処置に使用することができる。また第ＶＩＩａ因子が内因系の経路にも参加できること
を示唆する証拠もあるので、血液凝固における第ＶＩＩ因子の役割の突出および重要性が
増している。

第ＶＩＩ因子は約５０ｋＤａの分子量を持つ一本鎖の糖タンパク質である。この状態で
、この因子は血液中を不活性なプロ酵素として循環する。第ＶＩＩ因子のＶＩＩａへの活
性化は、第ＸＩＩａ因子のような数種の血漿プロテアーゼにより触媒され得る。第ＶＩＩ
因子の活性化は、少なくとも１つのジスルフィド結合により一緒に保たれる重鎖および軽
鎖の形成をもたらす。さらに第ＶＩＩａ因子に転換されることができない修飾された第Ｖ
ＩＩ因子分子が記載され、そしてこれらは血液凝固、血栓症等のような場合に抗−凝固薬
として有用である。血液凝固経路における第ＶＩＩ因子の重要性、および上昇または減少
した凝固レベルの両方の処置としての使用を仮定すると、より長い生物学的半減期、上昇
した能力および一般に野生型の第ＶＩＩ因子により似ている治療プロフィールを有する分
子が、健康なヒトで合成され、そして分泌されれば、血液凝固障害の処置に有益でしかも
有用となるだろう。

第ＶＩＩ因子はクローン化そして配列決定され、そして核酸およびアミノ酸配列が本明
細書に配列番号７および配列番号８（それぞ図５５Ａおよび５５Ｂ）として提示されてい
る。本発明は本明細書で説明する第ＶＩＩ因子の核酸およびアミノ酸配列に全く限定され
ないと解釈されるべきである。第ＶＩＩ因子の変異体も例えば米国特許第４，７８４，９
５０号および同第５，５８０，５６０号明細書に記載され、ここでリシン−３８、リシン
−３２、アルギニン−２９０、アルギニン−３４１、イソロイシン−４２、チロシン−２
７８およびチロシン３３２が種々のアミノ酸に置き換えられている。さらに米国特許第５
，８６１，３７４号、同第６，０３９，９４４号、同第５、８３３，９８２号、同第５，
７８８，９６５号、同第６，１８３，７４３号、同第５，９９７，８６４号および同第５
，８１７，７８８号明細書は、第ＶＩＩａ因子の形態に開裂されない第ＶＩＩ因子変異体
を記載する。当業者は、血液凝固経路およびその中での第ＶＩＩ因子の役割については周
知であり、したがって天然に存在するか、または上記のように工作された多くの変異体が
本発明に含まれることを認識するだろう。

第ＶＩＩ因子の発現および活性の測定法は当該技術分野では周知であり、そして例えば
米国特許第４，７８４，９５０号明細書に記載されている。簡単に説明すると、第ＶＩＩ
因子、またはその変異体の発現は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、ＣＨＯ細胞、ＢＨＫ細胞、
昆虫細胞を含む様々な原核および真核系で、バキュロウイルス発現系を使用して行うこと
ができ、そのすべてが当該技術分野では周知である。

本発明の方法に従い調製された修飾第ＶＩＩ因子の活性のアッセイは、当該技術分野で
周知な方法を使用して行うことができる。非限定的な例として、Ｑｕｉｃｋ ｅｔ ａｌ
．（出血性疾患および血栓症（Ｈｅｍｏｒｒａｇｉｃ Ｄｉｓｅａｓｅ ａｎｄ Ｔｈｒ
ｏｍｂｏｓｉｓ）、第２版、リート フェビガー（Ｌｅａｔ Ｆｅｂｉｇｅｒ）、フィラ
デルフィア、１９６６）は、本発明の方法に従い調製した第ＶＩＩ因子分子の生物学的活
性を測定するために有用な１段階凝固アッセイを記載している。
Ｄ．第ＩＸ因子
本発明はさらに第ＩＸ因子を改造および／または修飾するための方法を包含する。上記
のように第ＩＸ因子は血液凝固カスケードで活性で（ｖｉｔａｌ）ある。体内での第ＩＸ
因子の欠損は、血友病（Ｂ型）の型の特徴である。この疾患の処置は通常、ヒト血漿タン
パク質の第ＩＸ因子濃縮物の静脈内輸血に限られている。しかし時間および経費の現実的
な欠点に加えて、血液濃縮物の輸血にはウイルス性肝炎、後天的免疫不全症候群の伝播、
または受容者に対する血栓塞栓性疾患の危険性を含む。

第ＩＸ因子はそれ自体が治療的応用に重要かつ有用な化合物であることが示されたが、
組換え細胞から第ＩＸ因子を生産する現在の方法（米国特許第４，７７０，９９９号明細
書）は、生成物にやや短い生物学的半減期、免疫原性を導く可能性がある不適切なグリコ
シル化パターン、機能損失、同じ効果等を達成するためにより大量かつ頻繁な投与の必要
性の増加をもたらす。

第ＩＸ因子の核酸アミノ酸配列は、本明細書では配列番号９および配列番号１０（それ
ぞれ図５６Ａおよび５６Ｂ）に説明する。本発明は本明細書に説明する配列に全く限定さ
れない。第ＩＸ因子の変異体は例えば米国特許第４，７７０，９９９号、同第５，５２１
，０７０号明細書（ここでチロシンが第一位でアラニンに置換されている）、米国特許第
６，０３７，４５２号（ここで第ＸＩ因子はアルキレンオキシド基に結合している）、お
よび米国特許第６，０４６，３８０号明細書（ここで第ＩＸ因子をコードするＤＮＡが少
なくとも１つのスプライス部位で修飾されている）に記載されているように、当該技術分
野で周知である。本明細書で示すように第ＩＸ因子の変異体も当該技術分野では周知であ
り、そして本開示はこれらの既知のまたは将来開発もしくは見いだされる変異体を包含す
る。

本発明の方法に従い調製された修飾第ＩＸ因子を活性を測定する方法は、上記の方法を
使用して、またはさらに例えばＢｉｇｇｓ（１９７２，ヒト血液凝固止血および血栓症（
第１版）（Ｈｕｍａｎ Ｂｌｏｏｄ Ｃｏａｇｕｌａｔｉｏｎ Ｈａｅｍｏｓｔａｓｉｓ
ａｎｄ Ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ）、オックスフォード、ブラックウェル、サイエンティ
フィック、第６１４頁）に記載されているような１段階の活性化部分トロンボプラスチン
時間アッセイのような周知方法を使用して行うことができる。簡単に説明すると、本発明
の方法により開発された第ＩＸ分子の生物学的活性をアッセイするために、このアッセイ
は等容量の活性化部分トロンボプラスチン試薬、Ｂ型血友病患者から単離した第ＩＸ因子
欠損血漿を用いて、当該技術分野で周知の滅菌瀉血技法、および標準として正常プール血
清またはサンプルを使用して行うことができる。このアッセイでは１単位の活性を、１ミ
リリットルの正常プール血清に存在する量と定める。さらに正常に対して第ＩＸ因子欠損
患者に由来する血漿の凝固時間を下げる第ＩＸ因子の能力に基づく生物学的活性に関する
アッセイが、例えばＰｒｏｃｔｏｒ ａｎｄ Ｒａｐａｐｏｒｔ（１９６１，Ａｍｅｒ．
Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｐａｔｈ．３６：２１２）に記載されているように行うことができる。
Ｅ．ＦＳＨ
本発明はさらＦＳＨを改造および／または修飾する方法を含む。ヒトの生殖機能は部分
的には、共通する９２アミノ酸糖タンパク質アルファサブユニットを有するが、ホルモン
−特異的ベータサブユニットが異なるヘテロ二量体のヒト糖タンパク質ホルモンのファミ
リーにより制御されている。このファミリーには濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）、黄体形成
ホルモン（ＬＨ）、チロトロピンまたは甲状腺−刺激ホルモン（ＴＳＨ）およびヒト絨毛
性性腺刺激ホルモン（ｈＣＧ）を含む。ヒトＦＳＨおよびＬＨは治療的に使用されて、ヒ
ト女性において生殖に関する様々な代謝的な観点を調節する。例えば尿から部分精製され
たＦＳＨは、無排卵症候群または黄体期欠損の無排卵女性の小胞成熟を刺激するために臨
床的に使用されている。黄体形成ホルモン（ＬＨ）およびＦＳＨは、インビトロの受精の
ために卵胞の生育の刺激に組み合わせて使用されている。生殖サイクルにおけるＦＳＨの
役割は十分によく知られているので治療的使用が可能であるが、部分的には天然な供給源
からの調製物の異質性および不純さから困難に遭遇した。

ＦＳＨはインビトロの受精およびインビボでの受精の刺激の両方に価値ある道具である
が、上述のようにその臨床的効力はタンパク質のグリコシル化の一貫性の無さから妨げら
れている。したがってＦＳＨを改造する方法が生殖科学に大変有益となるのは明らかと思
われる。

ＦＳＨはクローン化そして配列決定され、そのヌクレオチドおよびアミノ酸配列は本明
細書でそれぞれ配列番号１１および配列番号１２（アルファサブユニット）およびそれぞ
れ配列番号１３および配列番号１４（ベータサブユニット）として表す（それぞれ図５７
Ａおよび５７Ｂ）。当業者には本発明が、当該技術分野で周知であるＦＳＨの変異体のよ
うに本明細書に表す配列に限定されないと容易に考えるだろう。非限定的例として、米国
特許第５，６３９，６４０号明細書は２つの異なるアミノ酸配列を含んでなるベータサブ
ユニットを記載し、そして米国特許第５，３３８，８３５号明細書はヒト絨毛性性腺刺激
ホルモンのベータサブユニットに由来する約２７個のアミノ酸のさらなるアミノ酸配列を
含んでなるベータサブユニットを記載する。したがって本発明は天然のまたは人の手によ
り工作されたＦＳＨ変異体（すべて当該技術分野では周知である）を含んでなる。

原核および真核の両方の細胞中でＦＳＨを発現するための方法は当該技術分野では周知
であり、そして技術文献に豊富に記載されている（米国特許第４，８４０，８９６号、同
第４，９２３，８０５号、同第５，１５６，９５７号明細書）。さらに本発明の改造され
たＦＳＨ分子の生物学的活性を評価する方法は当該技術分野では周知であり、そして例え
ば米国特許第４，５８９，４０２号明細書（ここでＦＳＨが受精、卵の生産および妊娠率
に及ぼす効果を測定する方法が、非ヒト霊長類およびヒト個体の両方について記載されて
いる）に記載されている。
Ｆ．ＥＰＯ
本発明はさらＥＰＯを改造および／または修飾する方法を含んでなる。ＥＰＯは約３４
ｋＤａの酸性糖タンパク質であり、そして３つの天然な形態で存在することができる：ア
ルファ、ベータおよびアシアロ。アルファおよびベータ形は炭水化物成分がわずかに異な
るが、同じ能力、生物学的活性および分子量を有する。アシアロ形はアルファまたはベー
タ形であり、末端シアル酸が除去されている。ＥＰＯは身体が健康な状態である時は血漿
中に大変低濃度で存在し、ここで組織は既存の数の赤血球から十分な酸素を受容する。こ
の正常濃度は通常は加齢を通して失われる赤血球細胞の代替を刺激するために十分である
。循環中のエリトロポエチンの量は、循環中の血液細胞による酸素輸送が低下する時の低
酸素の条件下で増加する。低酸素は出血による大量の血液損失、照射に過剰暴露された赤
血球細胞の破壊、高山病または長期の意識不明による酸素取り込みの低下、または様々な
状態の貧血によるより引き起こされ得る。したがってＥＰＯは、照射療法後の赤血球細胞
の補充、貧血および他の生命を脅かす状態に有用な化合物である。

種々の疾患および障害から回復することを目的とするＥＰＯの重要性に鑑みて、本発明
は天然な、したがってより効果的なサッカリド成分を持つＥＰＯの生産に有用である。現
在合成されているようにＥＰＯは完全なグリコシル化補体を欠くので、したがって体内で
のその短い半減期により、より頻繁に、そしてより高用量で投与されなければならない。

ＥＰＯはクローン化そして配列決定され、そしてヌクレオチドおよびアミノ酸配列は本
明細書でそれぞれ配列番号１５および配列番号１６に表す（それぞれ図５８Ａおよび５８
Ｂ）。当業者には本明細書で説明する配列がＥＰＯをコードし、そして含んでなる配列の
単なる一例であると容易に理解するだろう。例として、米国特許第６，１８７，５６４号
明細書は２以上のＥＰＯペプチドのアミノ酸配列を含んでなる融合タンパク質を記載し、
米国特許第６，０４８，９７１号および同第５，６１４，１８４号明細書は、１０１、１
０３、１０４および１０８位でアミノ酸置換を有する突然変異体ＥＰＯ分子を記載する。
米国特許第５，１０６，９５４号明細書は短縮化されたＥＰＯ分子を記載し、そして米国
特許第５，８８８，７７２号明細書は３３、１３９および１６６位に置換を持つＥＰＯ類
似体を記載する。したがって当業者は本発明が技術文献および当該技術分野で十分に記載
されたＥＰＯおよびＥＰＯ誘導体および変異体を全部、包含すると認識するだろう。

さらに細胞中でＥＰＯを発現する方法は当該技術分野で周知である。とりわけ米国特許
第４，７０３，００８号、同第５，６８８，６７９号および同第６，３７６，２１８号明
細書に例示されるように、ＥＰＯは原核および真核発現系で発現することができる。ＥＰ
Ｏの生物学的活性を測定する方法も、等しく当該技術分野では周知である。例としてＫｒ
ｙｓｔａｌアッセイ（Ｋｒｙｓｔａｌ，１９８３，Ｅｘｐ．Ｈｅｍａｔｏｌ．１１：６４
９−６６０）を使用して、本発明の方法に従い調製したＥＰＯの活性を測定することがで
きる。簡単に説明すると、アッセイはエリトロポエチンが完全なマウス脾臓細胞に及ぼす
効果を測定する。マウスはエリトロポエチン−反応性赤血球細胞の子孫細胞の生産を刺激
するために、フェニルヒドラジンで処置される。処置後、脾臓を摘出し、完全な脾臓細胞
を単離し、そして様々な量の野生型エリトロポエチンまたは本明細書に記載するエリトロ
ポエチンタンパク質とインキューベーションする。一晩インキューベーションした後、^３
Ｈ−チミジンを加え、そして細胞内ＤＮＡの取り込みを測定する。^３Ｈ−チミジンの取り
込み量は、エリトロポエチンと細胞レセプターとの間の相互作用を介してエリトロポエチ
ンが刺激する血液細胞生産の指標である。本発明のエリトロポエチンのタンパク質濃度な
らびに野生型エリトロポエチンの濃度は、当該技術分野で周知の競合的ラジオイムノアッ
セイ法により定量される。比活性は、ラジオイムノアッセイにより免疫沈降可能なタンパ
ク質として測定された時、ミリグラムで除算されたＫｒｙｓｔａｌアッセイで測定した国
際単位として算出する。
Ｇ．ＧＭ−ＣＳＦ
本発明はＧＭ−ＣＳＦを修飾する方法を包含する。ＧＭ−ＣＳＦは活性化Ｔ−細胞、マ
クロファージ、内皮細胞およびストロマの繊維芽細胞により生産されるサイトカインとし
て当該技術分野では周知である。ＧＭ−ＣＳＦは主に骨髄に作用して炎症性白血球の生産
を増加し、そしてさらに内分泌ホルモンとして機能して炎症機能中に消費される好中球の
補充を開始する。さらにＧＭ−ＣＳＦはマクロファージ活性化因子であり、そしてランゲ
ルハンス細胞の樹状細胞への分化を促進する。Ｇ−ＣＳＦと同様に、ＧＭ−ＣＳＦは化学
療法後の骨髄代用にも臨床的応用を有する。

Ｇ−ＣＳＦはそれ自体が治療的応用に重要でしかも有用な化合物であると示されてきた
が、組換え細胞からのＧ−ＣＳＦを生産するための現在の方法は比較的短い生物学的寿命
、免疫原性を導く可能性がある不適切なグリコシル化パターン、機能の損失を有する生成
物、および同じ効果等を達成するためにより大量およびより頻繁な投与の両方の必要性の
増加をもたらす。

ＧＭ−ＣＳＦは単離そしてクローン化され、その核酸およびアミノ酸配列はそれぞれ配
列番号１７および配列番号１８（それぞれ図５９Ａおよび５９Ｂ）に示す。本発明はＧＭ
−ＣＳＦ、特に有力かつ機能的な生物学的分子として機能するＧＭ−ＣＳＦの能力に関係
するように修飾する方法を包含する。当業者は本開示および本明細書の技術をもってすれ
ば、本発明がＧＭ−ＣＳＦを修飾するための組成物および方法を提供することを容易に理
解するだろう。

本発明はさらに当該技術分野で周知なＧＭ−ＣＳＦ変異体を包含する。例として、しか
し本発明を限定することは全く意味せずにＧＭ−ＣＳＦ変異体はすでに国際公開第８６／
０６３５８号パンフレットに記載され、ここでタンパク質は選択的な（ａｌｔｅｒｎａｔ
ｉｖｅ）４次構造に修飾されている。さらに米国特許第６，２８７，５５７号明細書は、
遺伝子治療の応用のためにヘルペスウイルスのゲノムに連結されたＧＭ−ＣＳＦの核酸配
列を記載する。さらに欧州特許出願公開第０２８８８０９号明細書（国際公開第８７／０
２０６０号パンフレットに対応する）は、ＩＬ−２およびＧＭ−ＣＳＦを含んでなる融合
タンパク質を報告する。ＩＬ−２配列は、融合タンパク質の酸開裂後に、Ｎ−またはＣ−
末端配列修飾のいずれかを有するＧＭ−ＣＳＦが生成できるように、ＧＭ−ＣＳＦのＮ−
またはＣ−末端配列であることができる。したがってＧＭ−ＣＳＦ誘導体、突然変異体お
よび変異体は当該技術分野では周知であり、そして本発明の方法の中に包含される。

本発明の修飾されたＧＭ−ＣＳＦ分子の発現および活性は、当該技術分野で周知な、そ
して例えば米国特許第４，８１０，６４３号明細書に記載されているような方法を使用し
てアッセイすることができる。例として活性は放射能−標識チミジン取り込みアッセイを
使用して測定することができる。簡単に説明すると、健康なドナーに由来するヒトの骨髄
をＦｉｃｏｌｌ−Ｈｙｐａｑｕｅでの密度カットに供し（１．０７７ｇ／ｍｌ、ファルマ
シア、ピスカタウェイ、ニュージャージー州）、そして低密度細胞を、１０％ウシ胎児血
清、グルタミンおよび抗生物質を含むＩｓｃｏｖｅの培地（ギブコ、ラジョラ、カリフォ
ルニア州）に懸濁する。約２Ｘ１０^４個のヒト骨髄細胞を対照培地またはＧＭ−ＣＳＦま
たは本発明のいずれかと、９６−ウェル平底プレート中で約３７℃で空気中５％ＣＯ_２で
約２日間、インキューベーションする。次いでカルチャーは約４時間、０．５μＣｉ／ウ
ェルの^３Ｈ−チミジン（ニューイングランドヌクレアー、ボストン、マサチューセッツ州
）でパルスをかけ、そして取り込みを例えばＶｅｎｔｕａ，ｅｔ ａｌ．（１９８３，Ｂ
ｌｏｏｄ ６１：７８１）に記載されているように測定する。対照化合物で処理した骨髄
細胞と比べて、^３Ｈ−チミジンのヒト骨髄細胞への包含の上昇は、活性な、そして活力の
あるＧＭ−ＣＳＦ化合物の指標である。
Ｈ．ＩＦＮ−ガンマ
ＩＦＮ−ガンマを修飾および／または改造する方法を包含することは、本発明の目的で
ある。ＩＦＮ−ガンマはＩＩ型インターフェロンとしても知られているが、ＩＦＮアルフ
ァおよびＩＦＮベータとは対照的に、約２１〜２４ｋＤａの２つのサブユニットを含んで
なるホモ二量体糖タンパク質である。サイズの変動は、当該技術分野で知られている種々
の発現系で組換え的に再生した時、通常は複製しない可変性のグリコシル化パターンによ
るものである。ＩＦＮ−ガンマはマクロファージの有力なアクチベーターであり、ＭＨＣ
クラスＩ分子の発現、そして程度は低いがＭＨＣクラスＩＩ分子刺激物を上昇させる。さ
らにＩＦＮ−ガンマはＴ−細胞の分化およびＢ−細胞中でのアイソタイプスイッチを促進
する。ＩＦＮ−ガンマはまた好中球、ＮＫ細胞、および食細胞が媒介する排除を導く抗体
応答の刺激物としてもよく知られている。ＩＦＮ−ガンマは、結核症およびリーシュマニ
アのような細胞内病原体による感染と関連して使用される処置として、および種々の癌お
よび他の新形成のような、顕著な特徴として異常な細胞増殖を伴う状態に有用な抗−増殖
性治療剤としても提案された。

ＩＦＮ−ガンマは有力な免疫学的活性が証明されたが、ＩＦＮ−ガンマを発現するため
に現在使用されている系に由来するグリコシル化の変動により、治療薬の能力、効力、生
物学的半減期、および他の重要な因子は最善の状態では可変的である。本発明はこの重要
な欠点を正す方法を包含する。

ＩＦＮ−ガンマのヌクレオチドおよびアミノ酸配列は、本明細書ではそれぞれ配列番号
１９および配列番号２０に示す（それぞれ図６０Ａおよび６０Ｂ）。本明細書で説明する
配列は、本発明を限定するものでは全くないことは容易に理解される。対照的にＩＦＮ−
ガンマの変異体、誘導体および突然変異体は当業者には周知である。例として米国特許第
６，０８３，７２４号明細書は、組換えトリＩＦＮ−ガンマを記載し、そして米国特許第
５，７７０，１９１号明細書は、ヒトＩＦＮ−ガンマのＣ−末端変異体を記載する。さら
に米国特許第４，７５８，６５６号明細書は新規ＩＦＮ−ガンマ誘導体および種々の発現
系でそれらを合成する方法を記載する。したがって本発明は本明細書のいたるところに開
示するＩＦＮ−ガンマの配列に限定されず、当該技術分野で周知なすべての誘導体、変異
体、突然変異体等を包含する。

ＩＦＮ−ガンマの発現系も等しく当該技術分野では周知であり、そして原核および真核
系、ならびに植物および昆虫細胞調製物を含み、その方法は当業者に知られている。例と
して米国特許第４，７５８，６５６号明細書は大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）でＩＦＮ−ガンマ
誘導体を発現させる系を記載し、一方米国特許第４，８８９，８０３号明細書はチャイニ
ーズハムスター卵巣細胞およびＳＶ４０プロモーターを使用する発現系を記載する。

本明細書に開示された方法に従い調製されたＩＦＮ−ガンマの生物学的活性のアッセイ
は、当業者には周知である。ＩＦＮ−ガンマ発現の生物学的アッセイは、例えば米国特許
第５，８０７，７７４号明細書に見いだすことができる。簡単に説明すると、ＩＦＮ−ガ
ンマを、ＩＬ−３，ｃ−ｋｉｔリガンドおよびＩＬ−１、ＩＬ−６またはＧ−ＣＳＦのい
ずれかのようなサイトカインの組み合わせにより刺激したＣＤ３４^＋＋ＣＤ３８⁻細胞（
ウェルあたり１００個の細胞）のカルチャーに加えて、ＣＤ３４^＋＋ＣＤ３８⁻細胞の増
殖を誘導する。細胞増殖および２次コロニー形成細胞の生成は用量依存的様式で大いに阻
害され、５０００Ｕ／ミリリットルのＩＦＮ−ガンマでほぼ完全な阻害が起こる。ＩＦＮ
−ガンマの阻害効果に対する確認試験として、対照としてＩＦＮ−ガンマ抗体の添加を行
うことができる。
Ｉ．アルファ−プロテアーゼインヒビター（α−アンチトリプシン）
本発明はさらに、アルファ−アンチトリプシンとしても知られているアルファ−プロテ
アーゼインヒビター（Ａ−Ｉ−ＰＩ、α−１−アンチトリプシンまたはα−１−トリプシ
ンインヒビター）の改造方法を含む。Ａ−Ｉ−ＰＩは５３ｋＤａの分子量を有する糖タン
パク質である。Ａ−Ｉ−ＰＩは内因性のセリンプロテアーゼによる組織破壊の制御に役割
を有し、そして血漿中で最も有名なセリンプロテアーゼインヒビターである。特にＡ−Ｉ
−ＰＩは好中球エラスターゼを含む種々のエラスターゼを阻害する。エラスターゼは組織
を破壊するプロテアーゼであり、そしてその活性が肺組織で調節されない時、特に問題を
生じる。このプロテアーゼは外来タンパク質を分解することにより機能する。しかしＡＰ
Ｉがエラスターゼ活性を調節するために十分な量で存在しない時、エラスターゼは肺組織
を分解する。早晩、この平衡失調が慢性の肺組織傷害および気腫をもたらす。実際に、Ａ
−１−ＰＩの遺伝的欠損は、肺気腫の未成熟な発生を伴うことが示された。Ａ−１−ＰＩ
の補充はこの状態の気腫の治療に成功裏に使用された。さらにＡ−１−ＰＩの欠損は嚢胞
性繊維症および関節炎のような他の疾患の悪化にも関与し、この場合、白血球は感染と戦
うために肺または関節に移動する。

したがってＡ−１−ＰＩは恐らく、インヒビターとプロテアーゼ（１つまたは複数）、
特に好中球エラスターゼとの間の平衡失調が疾患状態の進行を引き起こす疾患を処置する
ために使用できるだろう。抗ウイルス活性もＡ−１−ＰＩに起因した。この観点で本発明
は論理上、肺の空気の永久的な交換に、安全で、効果的で、しかも有力であるＡ−１−Ｐ
Ｉの生産に有用となる。

Ａ−１−ＰＩはクローン化そして配列決定され、そして配列番号２１および配列番号２
２に説明する（それぞれ図６１Ａおよび６１Ｂ）。当業者に理解されるように、Ａ−１−
ＰＩの天然な、および工作された変異体が存在し、そして本発明に包含される。例として
米国特許第５，７２３，３１６号明細書は、３５６〜３６１位にアミノ酸置換を有し、そ
してさらに約３個のアミノ酸のＮ−末端延長を含んでなるＡ−１−ＰＩ誘導体を記載する
。米国特許第５，６７４，７０８号明細書は、１次アミノ酸配列の３５８位にアミノ酸置
換を持つＡ−１−ＰＩ類似体を記載する。当業者は本発明が既知の、または今後見いださ
れるＡ−１−ＰＩ変異体、誘導体および突然変異体を包含すると容易に認識するだろう。

本発明の方法に従い生産された改造Ａ−１−ＰＩ活性の発現および測定法は当該技術分
野では周知であり、そして例えば米国特許第５，６７４，７０８号および同第５，７２３
，３１６号明細書に記載されている。簡単に説明すると生物学的活性は、例えばＤｅｌＭ
ａｒ ｅｔ ａｌ．，（１９７９，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．９９：３１６）に記載さ
れているように、基質Ｎ−ｓｕｃ−Ａｌａ−−Ａｌａ−−Ｐｒｏ−−Ｐｈｅ−ｐ−ニトロ
アニリド（９０％ＤＭＳＯ中、０．１ｍｌの１０ｍＭ溶液）のキモトリプシンが触媒する
加水分解の阻害を測定することにより、アンチキモトリプシン活性に関するアッセイを使
用して測定することができる。典型的なキモトリプシンアッセイは、１．０ミリリットル
中に：１００ｍＭ Ｔｒｉｓ−Ｃｌバッファー、ｐＨ８．３、０．００５（容量／容量）
％ ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、ウシ膵臓キモトリプシン（１８キロモル）および本発明の
Ａ−１−ＰＩを含む。アッセイ混合物を室温で５分間、プレ−インキューベーションし、
基質（９０％ＤＭＳＯ中、０．０１ｍｌの１０ｍＭ溶液）を加え、そして残りのキモトリ
プシン活性を、ｐ−ニトロアニリンの放出により生じる４１０ｎｍでの吸収の変化の割合
により決定する。光学的吸収の測定は、温度制御サンプル区画を備えた分光光度計を使用
して２５℃で行う。
Ｊ．グルコセレブロシダーゼ
本明細書に記載する本発明はさらに、グルコセレブロシダーゼを修飾する方法を含む。
グルコセレブロシダーゼは糖脂質であるグルコセレブロシドをグルコースおよびセラミド
へ加水分解することを触媒するリソソームの糖タンパク質酵素である。グルコセレブロシ
ダーゼの変異体は、Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標）およびＣｅｒｅｄａｓｅ（商標）として市
販されており、ゴーシェ病の処置に治療薬として認可されている。Ｃｅｒｅｄａｓｅ（商
標）は完全なＮ−結合構造を有するグルコセレブロシダーゼの胎盤に由来する形態である
。Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標）は４９７アミノ酸長で、ＣＨＯ細胞で発現されたグルコセレ
ブロシダーゼの組換え変異体である。Ｃｅｒｅｚｙｍｅの４Ｎ−結合グリカンはトリマン
ノースコアで終結するように修飾された。

グルコセレブロシダーゼは現在、組換え哺乳動物細胞培養で生産され、したがってこれ
らの細胞、通常、チャイニーズハムスター卵巣細胞またはベビーハムスター腎臓細胞のよ
うな齧歯類の細胞のグリコシル化パターンを反映し、これはヒトのグリコシル化パターン
とは劇的に異なり、中でも免疫原性および能力の欠如を導く。

グルコセレブロシダーゼの核酸およびアミノ酸配列は本明細書で配列番号２３および２
４に説明する（それぞれ図６２Ａおよび６２Ｂ）。しかし当業者には明らかであるように
、本明細書で提示する配列は原型配列であり、そして本発明を限定するものではない。実
際にグルコセレブロシダーゼの変異体は周知であり、そして例えば米国特許第６，０１５
，７０３号明細書に記され、これはグルコセレブロシダーゼ同族体およびその変異体の強
化された生産を記載する。さらに米国特許第６，０８７，１３１号明細書は、別のグルコ
セレブロシダーゼ変異体のクローニングおよびシークエンシングを記載する。既知の、ま
たは将来見いだされるこれらおよび他の誘導体、変異体および突然変異体を包含すること
は本発明の意図するところである。

標準的な技法を使用したグルコセレブロシダーゼの発現法は周知であり、そして例えば
米国特許第６，０１５，７０３号明細書に詳細に記載されている。本発明の方法に従い調
製されたグルコセレブロシダーゼ分子の生物学的効力のアッセイも同様に当該技術分野で
は周知であり、そして評価のためのマウスのゴーシェ病モデルおよびグルコセレブロシダ
ーゼ治療薬の使用は、例えばＭａｒｓｈａｌｌ ｅｔ ａｌ．，（２００２，Ｍｏｌ．Ｔ
ｈｅｒ．６：１７９）に記載されている。
Ｋ．ＴＰＡ
本発明はさらに組織−型アクチベーター（ＴＰＡ）の改造方法も包含する。ＴＰＡはプ
ラスミノーゲンを活性化して、フィブリン（血栓のタンパク質物質の主成分）を溶解する
プラスミンを形成する。ＴＰＡ調製物は、心筋梗塞および脳梗塞を引き起こす血栓症の血
栓溶解処置において血栓に対して大変高い選択性を有する血栓溶解剤として開発された。

さらにフィブリンに対する高い親和性および天然なＴＰＡよりも長い血液中の半減期を
得る目的で、様々な修飾されたＴＰＡが遺伝子工学により生産されてきた。原核生物から
生産された修飾ＴＰＡの形態は天然のＴＰＡとは異なりグリコシル化されていない。ＴＰ
Ａは、一般に水に溶解することが極端に難しいタンパク質である。特に修飾されたＴＰＡ
は天然なＴＰＡよりも水に溶解することが難しく、修飾されたＴＰＡの調製を大変難しく
している。このように修飾されたＴＰＡは患者に投与する時に水に溶解することが難しい
。しかし修飾されたＴＰＡはフィブリンに対して上昇した親和性および血液中でのより長
い半減期のような種々の利点を有する。本発明の目的は修飾されたＴＰＡの可溶性を上昇
させることである。

ＴＰＡの核酸およびアミノ酸配列は、それぞれ配列番号２５および配列番号２６として
本明細書に説明する（それぞれ図６３Ａおよび６３Ｂ）。上記のようにＴＰＡの変異体は
治療的応用に構築され、そして使用されてきた。例えば米国特許第５，７７０，４２５号
明細書はフィブリンドメインの幾つか、またはすべてが削除されたＴＰＡ変異体を記載す
る。さらに米国特許第５，７３６，１３４号明細書は、２７６位のアミノ酸に対する修飾
が開示されているＴＰＡを記載する。当業者は本開示および本明細書の教示をもってすれ
ば、本発明が本明細書に説明するＴＰＡ配列ならびに技術文献に精通した人に周知なそれ
ら変異体を含んでなることを容易に認識するだろう。

ＴＰＡをコードする核酸配列からのＴＰＡの発現は当該技術分野では周知であり、そし
て例えば米国特許第５，７５３，４８６号明細書に詳細に記載されている。本発明の方法
に従い調製したＴＰＡ分子の生物学的特性を測定するアッセイも、当該技術分野では同様
に周知である。簡単に説明すると、本明細書のいたるところに開示するように合成したＴ
ＰＡ分子は、Ｃａｒｌｓｅｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１
６８：４２８）の方法に従い、飽和濃度のプラスミノーゲンの存在下でフィブリンを溶解
するそれらの能力についてアッセイすることができる。インビトロの血塊溶解アッセイは
、微遠心（ｍｉｃｒｏｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ）分析機を使用した比濁法により組織−型
アクチベーターの活性を測定する。トロンビンおよびＴＰＡの混合物をフィブリノーゲン
およびプラスミノーゲンの混合物中で遠心して血塊形成を開始し、そして引き続き血塊を
溶解する。生成した吸収 対 時間のプロフィールを分析してアッセイの終点を決定する
。ＴＰＡ変異体の活性はＴＰＡの標準曲線と比較する。アッセイを通じて使用するバッフ
ァーは、０．０１（容量／容量）％ＴＷＥＥＮ８０および０．０１（重量／容量）％のア
ジ化ナトリウムを含有する０．０６Ｍリン酸ナトリウム、ｐＨ７．４である。ヒト トロ
ンビンは約３３単位／ｍｌの濃度である。フィブリノーゲン（２．０ｍｇ／ｍｌの血塊性
タンパク質）を湿った氷上で冷却してフィブロネクチンを沈殿させ、そして次いで重力に
より濾過する。Ｇｌｕ−プラスミノーゲンは１ｍｇ／ｍｌの濃度である。分析機のチャン
バーの温度は３７℃に設定する。ローダーは、標準曲線用のサンプルとして２０マイクロ
リットルのＴＰＡ（約５００ナノグラム／ミリリットル〜約１．５マイクログラム／ミリ
リットル）を、または標準曲線の範囲内で溶解を引き起こす濃度で２０マイクロリットル
の変異体ＴＰＡを分配するように設定する。第２試薬として２０マイクロリットルのトロ
ンビン、および１次試薬として２００マイクロリットルの５０：１（容量／容量）のフィ
ブリノーゲン：プラスミノーゲン混合物。吸収／時間プログラムは５分間のインキュベー
ション時間、３４０−ナノメーターのフィルターおよび９０秒間隔の読み取りで使用する
。
Ｌ．ＩＬ−２
本発明はさらにＩＬ−２を改造および修飾する方法を包含する。ＩＬ−２はＴリンパ球
の主要な増殖因子であり、そして細胞傷害性ＣＤ８Ｔ細胞およびＮＫ細胞を刺激すること
により液性および細胞性免疫応答を上昇させる。したがってＩＬ−２は腫瘍およびウイル
ス感染に対する防御メカニズムにおいて重要である。ＩＬ−２は転移性メラノーマおよび
腎腺癌に対する治療にも使用され、そして臨床試験で多くの形態の癌に使用されてきた。
さらにＩＬ−２は、ＣＤ４カウントの有意な上昇を導くＨＩＶに感染した患者にも使用さ
れてきた。

ＩＬ−２が様々な癌およびＡＩＤＳのような生命を脅かす疾患の管理および処置におい
て証明した成功を考慮すれば、本発明の方法はより長い生物学的半減期、上昇した能力、
そして一般に健康なヒトで合成分泌されるような野生型のＩＬ−２に似た治療プロフィー
ルを有するＩＬ−２分子を開発するために有用ということになるだろう。

ＩＬ−２はクローン化そして配列決定され、そして核酸およびアミノ酸配列を本明細書
で配列番号２７および配列番号２８に示す（それぞれ図６４Ａおよび６４Ｂ）。本発明は
本明細書に説明するＩＬ−２の核酸およびアミノ酸配列に限定されると全く解釈されるべ
きではない。ＩＬ−２の変異体は例えば米国特許第６，３４８，１９３号明細書に記載さ
れ、ここで８８位のアスパラギンがアルギニンに置換され、そして米国特許第５，２０６
，３４４号明細書では、種々のアミノ酸置換を持つＩＬ−２変異体を含んでなるポリマー
が記載されている。本発明はこれらのＩＬ−２変異体および当該技術分野で周知なその他
を包含する。

ＩＬ−２の発現および活性の測定法は当該技術分野で周知であり、そして例えば米国特
許第５，４１７，９７０号明細書に記載されている。簡単に説明すると、ＩＬ−２または
その変異体の発現は、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、ＣＨＯ細胞、ＢＨＫ細胞、昆虫細胞を含
む種々の原核および真核系の両方で、バキュロウイルス発現系を使用して行うことができ
、それらすべてが当該技術分野では周知である。

本発明の方法に従い調製された修飾ＩＬ−２の活性についてのアッセイは以下のように
進めることができる。末梢血リンパ球は、例えばＡ．Ｂｏｙｕｍ ｅｔ ａｌ．（Ｍｅｔ
ｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１９８４，Ｖｏｌ．１０８，ｐａｇｅ８８、ア
カデミック出版社）に記載された方法により、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｈｙｐａｑｕｅ（ファルマ
シア、ピスカタウェイ、ニュージージー州）勾配での遠心により、赤血球および顆粒球か
ら分離することができる。続いてリンパ球は、ＲＲＭＩ１６４０（ギブコ−ＢＲＬ、ラジ
ョラ、カリフォルニア州）に熱（５６℃で１時間）不活性化した１０％ＡＢヒト血清（Ｃ
ＴＳパーパン（Ｐｕｒｐａｎ）、トゥールーズ、フランス）、２ｍＭ ピルビン酸ナトリ
ウム、５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、４ｍＭ Ｌ−グルタミン、１００Ｕ／ｍｌ ペニシリン、１
００μｇ／ｍｌストレプトマイシンおよび０．２５μｇ／ｍｌのアンホテリシンを加えて
なる培養基（完全培地）で約３回洗浄する。

接着細胞（単核およびマクロファージ）はプラスティックに接着させることにより排除
し、そして残りの細胞を完全培地にミリリットル当たり約５〜１０Ｘ１０^５細胞の濃度で
懸濁し、そして平方センチメートルあたり約１〜２Ｘ１０^５細胞の密度で培養フラスコに
播種した。次いでフラスコを３７℃で５％ＣＯ_２の雰囲気中で約１時間インキューベーシ
ョンし、その後、非−接着リンパ球は培養フラスコをゆるやかに撹拌した後、吸引により
回収する。

非−接着リンパ球を１回洗浄し、そしてミリリットルあたり約１０^５細胞の濃度で本発
明のＩＬ−２の存在下、完全培地中で約４８時間、上記のインキューベーター中で培養す
る。次いで細胞を１回洗浄する。

細胞の細胞傷害活性は、Ｓａｌａｈｕｄｄｉｎ ｅｔ ａｌ．（１９８３，Ｖｉｒｏｌ
ｏｇｙ １２９：５１−６４；１９８４，Ｓｃｉｅｎｃｅ：２２３，７０３−７０７）に
より記載されているように、ＮＫ細胞の細胞傷害性に対して耐性のヒトＴリンパ系Ｃ８１
６６−４５／Ｃ６３（ＨＴ１細胞）の標的細胞と約４時間接触させた後に評価する。６Ｘ
１０^５ＨＴ１細胞を約２００μＣｉの^５１Ｃｒ（クロム酸ナトリウム、アマーシャム、ア
ーリントンハイツ、イリノイ州）で、３７℃で約１時間、血清を含まない完全培地中で放
射−標識し、次いで数回洗浄する。標的細胞およびエフェクティブ細胞は丸底マイクロタ
イタープレートに、エフェクティブ細胞 対 標的細胞の比率を変動させながら分配する
（５０：１、１０：１、１：１）。マイクロタイタープレートを遠心し、そして上記のよ
うにインキューベーションした後、各ウェルからの上清を回収し、そして放射性をガンマ
カウンターを使用して測定する。細胞傷害性は死んだ標的細胞により放出された^５１Ｃｒ
の量から決定する。非−特異的細胞傷害性は、エフェクティブ細胞の不存在下で、標的細
胞から天然に放出された放射性の量から決定する。

本方法はエフェクター細胞の細胞傷害性を測定するために当該技術分野で周知な多くの
方法のうちの１つであり、そして本発明を限定するとは解釈すべきではない。
Ｍ．第ＶＩＩＩ因子
本発明はさらに第ＶＩＩＩ因子の改造および修飾法を包含する。第ＶＩＩおよび第ＩＸ
因子について前に記載したように、第ＶＩＩＩ因子は血液凝固経路の重要な成分である。
ヒト第ＶＩＩＩ因子（抗血友病因子；ＦＶＩＩＩ：Ｃ）は２つのペプチド（８０ｋＤａの
軽鎖分子量、およびグリコシル化状態に依存して９０から２２０ｋＤａまで可変の重鎖分
子量）からなるヒト血漿タンパク質である。これは凝固経路の必須なコファクターであり
、そして第Ｘ因子がその活性状態（第Ｘａ）因子に転換するために必要である。第ＶＩＩ
Ｉ因子は、２０５０ａａペプチドの二量体であるフォン ビルブラント（ｖｏｎ Ｗｉｌ
ｌｉｂｒａｎｄ）因子（ａｋａ ＦＶＩＩＩ：ＲＰ）との非共有複合体として血漿中を循
環する（米国特許第６，３０７，０３２号明細書を参照にされたい）。正常の２０％未満
の第ＶＩＩＩ因子の血液濃度は、血友病Ａと呼ばれる出血性障害を引き起こす。１％未満
の第ＶＩＩＩ因子の血液レべルは、重篤な出血障害を生じ、最も共通する症状である天然
な関節出血を伴う。

他の血液凝固因子と同様に、第ＶＩＩＩ因子は血友病Ａおよび血友病Ｂのような様々な
出血性障害の処置に相当有力な治療薬である。重鎖のグリコシル化により、組換え細胞か
ら第ＶＩＩＩ因子を調製する現在の方法は、天然な第ＶＩＩＩ因子ほど効果的な生成物を
もたらさない。ヒト血漿からの精製法は効果が低く、そして組換え第ＶＩＩＩ因子を調製
するよりも難しい粗組成物をもたらす。本発明はこの状況の改善を求める。

第ＶＩＩＩ因子の核酸およびアミノ酸配列は、本明細書で配列番号２９および配列番号
３０にそれぞれ表す（それぞれ図６５Ａおよび６５Ｂ）。当該技術分野では例えば米国特
許第５，６６８，１０８号明細書に記載されているように（ここで１２４１位のアスパラ
ギン酸がグルタミン酸に置き換えられ、関連する核酸も変わる）、第ＶＩＩＩ因子のおび
ただしい数の変異体が存在する。米国特許第５，１４９，６３７号明細書はグリコシル化
されているか、または非グリコシル化のＣ−末端画分を含んでなる第ＶＩＩＩ因子変異体
を記載し、そして米国特許第５，６６１，００８号明細書はアミノ酸１６４９〜２３３２
に少なくとも３個のアミノ酸残基で連結したアミノ酸１〜７４０を含んでなる第ＶＩＩＩ
因子変異体を記載する。したがって第ＶＩＩＩ因子の変異体、誘導体、修飾および複合体
は当該技術分野では周知であり、そして本発明に包含される。

第ＶＩＩＩ因子を生産するための発現系は当該技術分野では周知であり、そして米国特
許第５，６３３，１５０号、同第５，８０４，４２０号および同第５，４２２，２５０号
明細書に例示されるように原核および真核細胞を含む。

本発明の方法に従い合成された第ＶＩＩＩ因子分子の生物学的活性を測定するために、
当業者は第ＶＩＩ因子および第ＩＸ因子を評価するために本明細書に記載したアッセイが
第ＶＩＩＩ因子にも応用可能であることを認識するだろう。
Ｎ．ウロキナーゼ
本発明はウロキナーゼを改造および／または修飾する方法も含む。ウロキナーゼはプラ
スミノーゲンをプラスミンに活性化するセリンプロテアーゼである。このタンパク質は内
皮および腎臓を含む種々の組織中で合成され、そして尿中に微量分泌される。精製された
ウロキナーゼは２つの活性形態、高分子量形（ＨＵＫ：約５０ｋＤａ）および低分子量形
（ＬＵＫ：約３０ｋＤａ）で存在する。ＬＵＫはＨＵＫから最初の１３５アミノ酸を放出
するリシン３５以降のタンパク質分解により、ＨＵＫから誘導されることが示された。Ｈ
ＵＫまたはＬＵＫは、プロウロキナーゼと呼ばれる１本鎖前駆体の、リシン１５８とイソ
ロイシン１５９との間のタンパク質分解的加水分解によりタンパク質分解的に活性な形に
転換されて、二本鎖の活性化形（これはＨＵＫまたはＬＵＫをいずれかに対応し続ける）
を生じるはずであるという従来の見識が維持された。この加水分解的切断から生じるタン
パク質分解的に活性なウロキナーゼ種は、１つのジスルフィド結合により一緒に保持され
る２つのアミノ酸鎖を含む。活性化切断により形成された２つの鎖をＡまたはＡ_１鎖（そ
れぞれＨＵＫまたはＬＵＫ）と呼び、そしてＢ鎖は分子のプロテアーゼドメインを含んで
なる。 ウロキナーゼは効果的な血栓溶解剤であることが示されてきた。しかしこれは天
然には微量でしか生産されないので、効果的な投薬用量のための酵素のコストは高い。ウ
ロキナーゼは組換え細胞培養で生産され、そしてウロキナーゼをコードするＤＮＡは適当
なベクターおよび宿主微生物と一緒に知られている。ウロキナーゼを含んでなる現在の組
成物およびウロキナーゼを組換え的に生産する方法はグリコシル化パターンが欠如した産
物により阻まれ、そしてウロキナーゼの活性化を取り巻く複雑なタンパク質分解的開裂を
考慮すると、この異型のグリコシル化は効果が低く、そして能力が低い生成物を導く。

ウロキナーゼの１次アミノ酸鎖をコードするヌクレオチドの配列を、配列番号３３およ
び配列番号３４に表す（それぞれ図６６Ａおよび６６Ｂ）。ウロキナーゼの変異体は当該
技術分野では周知であり、したがって本発明は本明細書に説明する配列に限定されない。
実際に当業者は例えば米国特許第５，２１９，５６９号、同第５，６４８，２５３号およ
び同第４，８９２，８２６号明細書に記載されているウロキナーゼ変異体が機能的部分と
して存在し、したがって本明細書に包含されることを容易に認識するだろう。

本発明の方法に従い調製されたウロキナーゼ分子の発現および評価は、同様に当該技術
分野では周知である。非限定的な例として、様々な系でのウロキナーゼの発現が米国特許
第５，２１９，５６９号明細書に詳細に記載されている。本発明の方法に従い調製された
ウロキナーゼの活性および機能性を測定するためアッセイは本明細書で説明され、そして
技術文献を通して記載され、そしていたるところにあまねく記載されている他のプラスミ
ノーゲンのアッセイおよびフィブリン関連アッセイに類似している。本明細書に記載する
ように合成したウロキナーゼ分子の活性を測定するためのアッセイの１例は、例えば１．
２５％アガロース、４．１ｍｇ／ｍｌヒトフィブリノーゲン、０．３単位／ｍｌのトロン
ビンおよび０．５μｇ／ｍｌのダイズトリプシンインヒビターを含んでなるフィブリンプ
レートを使用するＰｌｏｕｇ，ｅｔ ａｌ．（１９５７，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙ
ｓ．Ａｃｔａ２４：２７８−２８２）に記載されているアッセイであることができる。
Ｏ．ヒトＤＮａｓｅ
本発明はさらに組換えヒトＤＮａｓｅを改造および／または修飾する方法を包含する。
ヒトＤＮａｓｅＩは治療薬として試験され、そしてインビトロで嚢胞性線維症の粘液の粘
度を低下させることが示された。化膿した粘液は約１０〜１３ｍｇ／ｍｌのＤＮＡを含む
と測定され、イオン性ポリマーが気道流体の流動学的特性に影響を及ぼすと予想された。
したがってウシ膵臓ＤＮａｓｅＩ（ＤＮＡを分解する酵素）が粘液溶解剤として何年も前
に試験されたが、抗原性および／または混入プロテアーゼにより誘導される副作用から臨
床的実施には入らなかった。組換えヒトＤＮａｓｅは現在、嚢胞性線維症のような疾患の
症状を緩和するために治療薬として使用されている。

ウシ起源のＤＮａｓｅと同様に、組換えヒトＤＮａｓｅには幾つかの困った問題をかか
え、ほとんどが現在使用されている哺乳動物発現系により伝えられた不適切なグリコシル
化により低下した効力による。本発明はＤＮａｓｅを改造する方法を記載し、上昇した効
力およびより良い治療的結果を導く。

ヒトＤＮａｓｅのヌクレオチドおよびアミノ酸配列は、本明細書では配列番号３９およ
び配列番号４０に提示する（それぞれ図６７Ａおよび図６７Ｂ）。ＤＮａｓｅを含んでな
るペプチドの変異体は当該技術分野では周知である。例として米国特許第６，３４８，３
４３号明細書は１次構造全体にわたり多数のアミノ酸置換を持つヒトＤＮａｓｅを記載す
る。さらに米国特許第６，３９１，６０７号明細書は９、１４、７４、７５および２０５
位に多数のアミノ酸置換を持つＤＮａｓｅの超活性変異体を記載する。この例および当該
技術分野で他の周知の変異体、または将来見いだされる変異体は本発明に包含する。

ＤＮａｓｅペプチドを生産するための発現系は当業者には周知であり、そして原核およ
び真核系で記載された。例えばＰＣＴ特許出願、国際公開第９０／０７５７２号パンフレ
ットはかなり詳細にこれらの方法を記載する。

本発明の方法に従い開発したＤＮａｓｅ分子の生物学的活性を測定するアッセイは、当
該技術分野で周知である。例として、しかし本発明を限定するとは全く意味せずに、ヒト
ＤＮａｓｅＩのＤＮＡ−加水分解活性を測定するアッセイを本明細書に提示する。簡単に
説明すると、２種類のプラスミド消化アッセイを使用する。第１アッセイ（「スーパーコ
イル化ＤＮＡ消化アッセイ」）は、スーパーコイル化二本鎖プラスミドＤＮＡの、弛緩し
た（ニック入り）、線状および分解形への転換を測定する。第２アッセイ（「線状ＤＮＡ
消化アッセイ」）は、線状の二本鎖プラスミドＤＮＡの分解形への転換を測定した。具体
的には、本発明の方法に従い調製したＤＮａｓｅを、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．１
、１００μｇ／ｍｌウシ血清アルブミン、１ｍＭ ＭｇＣｌ_２、２．５ｍＭ ＣａＣｌ_２
、１５０ｍＭ ＮａＣｌ中に、２５マイクログラム／ミリリットルのスーパーコイル化プ
ラスミドＤＮＡまたはＥｃｏＲ −消化線状化プラスミドＤＮＡのいずれかを含んでなる
１６０マイクロリットルの溶液に加え、そしてサンプルを室温でインキューベーションす
る。様々な時間で、反応混合物のアリコートを取り出し、そして２５ｍＭ ＥＤＴＡをキ
シレンシアノール、ブロモフェノールブルーおよびグリセロールと一緒に加えることによ
り止める。止めたサンプル中のプラスミドＤＮＡの完全性はアガロースゲルでのサンプル
の電気泳動により分析する。電気泳動後、ゲルはエチジウムブロミドの溶液で染色し、そ
してゲル中のＤＮＡを紫外線光により視覚化する。スーパーコイル形、弛緩形および線形
のプラスミドＤＮＡの相対的量は、ゲルを蛍光造影機で走査し（モレキュラーダイナミッ
クス（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｙｎａｍｉｃｓ）モデル５７５ＦｌｕｏｒＩｍａｇｅｒ）
、そしてゲルのバンド中の異なる状態に対応するＤＮＡ量を定量することにより決定する
。
Ｐ．インスリン
本発明はさらにインスリンの改造方法を含む。インスリンは、血中グルコースレベルを
調節するために膵臓のベータ小島細胞がインスリンを生産しないＩ型糖尿病に最も効果的
な処置であることは周知である。糖尿病の系統および非制御血中グルコースには、循環器
系および足の問題、および失明、挙げることはしないが糖尿病の悪化からもたらされるか
、または悪化のいずれかである他の様々な合併症を含む。

ヒトインスリンのクローニングおよびシークエンシング以前は、ブタのインスリンが糖
尿病の処置に使用された。インスリンは今では組換え的に生産されているが、成熟分子の
短い、５１アミノ酸配列は多数のスルフィド結合を含んでなる複雑な構造である。インス
リンを組換え的に生産する現在の方法は、健康な非−糖尿病個体で生産されるような天然
なタンパク質との類似性を欠く生成物を生じる。本発明はこの弱点を修復することを試み
る。

ヒトインスリンのヌクレオチドおよびアミノ酸配列は、それぞれ配列番号４３および配
列番号４４に描かれている（それぞれ図６８Ａおよび６８Ｂ）。インスリンの変異体は当
該技術分野を通して豊富に存在する。米国特許第６，３３７，１９４号明細書はインスリ
ン融合タンパク質同族体を記載し、米国特許第６，３２３，３１１号明細書はジカルボン
酸の環式無水物を含んでなるインスリン誘導体を記載し、そして米国特許第６，２５１，
８５６号明細書は多数のアミノ酸置換および親油性基を含んでなるインスリン誘導体を記
載する。当業者はインスリン誘導体の以下の例が網羅的では全くなく、単に当該技術分野
で周知な誘導体の小さい実例を表すだけであると認識するだろう。したがって本発明は既
知のおよびこれから見いだされるインスリン誘導体を含んでなる。

インスリンを生産するための発現系は当該技術分野では周知であり、そして例えばＳａ
ｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（１９８９、モレキュラークローニング：ア ラボラトリー
マニュアル、コールドスプリングハーバーラボラトリー出版、ニューヨーク）に記載され
ているような分子生物学的技法を使用して行うことができる。

本発明の方法に従い調製されたインスリン分子の機能性を測定するアッセイも、当該技
術分野では周知である。例えばグルコース抑制のインビボモデルは、本発明の方法を使用
して合成されたインスリンの生物学的活性を評価するために使用することができる。この
目的に有用であるのはラットモデルである。動物は実験前に一晩絶食させ（１６時間）、
次いでペントバルビタールナトリウムまたはケタミンのような他の適当な麻酔剤を腹腔内
投与することにより麻酔をかける。各動物は特定のインスリン誘導体（２０μｇ／ｍｌ／
ｋｇ）のｉ．ｖ．注射（尾の静脈）を受ける。血液サンプルは頸静脈から注射の１５およ
び５分前、および注射から１５、３０、６０、９０、１２０、１８０および２４０分後に
採血する。血中グルコースレベルは、種々の商業的提供源から入手可能な血液グルコース
モニターで測定する。
Ｑ．Ｂ型肝炎ワクチン（ＨＢｓＡｇ）
本発明はさらにＢ型肝炎ワクチン（ＨｂｓＡｇまたはＢ型肝炎ｓＡｇ）で使用する抗原
を改造する方法を含んでなる。ＨＢｓＡｇはＢ型肝炎Ｓ−タンパク質の組換え的に生産さ
れる表面抗原であり、そしてＢ型肝炎ウイルス（とりわけ肝硬変および癌腫を含む肝臓疾
患を引き起こす危険なウイルスを増やし、そして世界中で年間に百万人以上の死をもたら
す）に対する免疫応答を誘導するために使用される。現在ＨＢｓＡｇワクチンは防御およ
び中和免疫応答を誘導するために、６カ月間の間隔で３回投与される。

現在、ＨＢｓＡｇは酵母株で生産され、したがって真菌に天然なグリコシル化パターン
を反映する。本発明はＨＢｓＡｇを改造するための方法を提供し、とりわけ改善された免
疫原性、ウイルスに対して改善された親和性を有する抗体等をもたらす。

Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢｓＡｇ）に由来するＳ−タンパク質の核酸および１次アミノ酸
鎖配列は、本明細書中に配列番号４５および配列番号４６として説明する（それぞれ図６
９Ａおよび６９Ｂ）。ヌクレオチドは１２０３塩基長である。アミノ酸は４００残基長で
ある。最後の２２６アミノ酸残基は小さいＳ−抗原であり、これはグラクソスミスクライ
ン（ＧｌａｘｏＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ）のワクチンおよびメルク（Ｍｅｒｃｋ）のワクチ
ンに使用されている。小さいＳ−抗原から上流の５５個のアミノ酸はプレ−Ｓ出発コドン
である。プレＳ＋Ｓ領域は中央Ｓ抗原であり、これはアベンティス パスツール（Ａｖｅ
ｎｔｉｓ Ｐａｓｔｅｕｒ）のワクチンに使用されている。第１出発コドンからプレ−Ｓ
出発コドンまでは残りのＳ−タンパク質を含んでなり、そして大きいＳ−タンパク質と呼
ばれている。これはワクチンに使用されているＨＢｓＡｇの１例であるが、ＧｅｎＢａｎ
ｋ Ａｃｃ Ｎｏ．に例示されているように他のサブタイプも周知である：ＡＦ４１５２
２２、ＡＦ４１５２２１、ＡＦ４１５２２０およびＡＦ４１５２１９。本明細書に提示さ
れた配列は単に当該技術分野で知られているＨＢｓＡｇの例である。同様な抗原がＢ型肝
炎ウイルスの他の株から単離され、そしてワクチン候補として抗原性および能力を評価さ
れたかもしれないし、またはされなかったかもしれない。したがって本発明は既知の、ま
たは今後見いだされるＢ型肝炎ワクチンＳ−タンパク質表面抗原を包含する。

発現系でのＨＢｓＡｇの発現は当業者には日常的な手順であり、そして例えば米国特許
第５，８５１，８２３号明細書に記載されている。ワクチンの免疫原性に関するアッセイ
は当該技術分野では周知であり、そして中和抗体を生産するための種々の試験を含んでな
り、そしてＥＬＩＳＡ、中和アッセイ、ウエスタンブロット、免疫沈降等のような技法を
使用する。簡単に説明すると、効果的な抗−ＨＢｓＡｇ抗体を検出するためのサンドイッ
チＥＬＩＳＡが記載されている。Ｅｎｚｙｇｎｏｓｔ ＨＢｓＡｇアッセイ（アベンティ
ス ベーリング（Ｂｅｈｒｉｎｇ）、キングオブプルシア、ペンシルバニア州）をそのよ
うな方法に使用する。ウェルは抗−ＨＢｓでコートされる。血清血漿または精製したタン
パク質および適切な対照をウェルに加え、そしてインキューベーションする。洗浄後、Ｈ
ＢｓＡｇに対するペルオキシダーゼ−標識抗体を残りの抗原決定基と反応させる。非結合
酵素−結合抗体を洗浄により除き、そして固体相上の酵素活性を当該技術分野で周知な方
法により測定する。過酸化水素および発色源の酵素的に触媒される反応は、希釈した硫酸
を加えることにより止める。色の強度はサンプルのＨＢｓＡｇ濃度に比例し、そして未知
のサンプルの色の強度は、付随する負および正の対照血清の色の強度と分光的に比較する
ことにより得られる。
Ｒ．ヒト成長ホルモン
本発明はさらにヒト成長ホルモン（ＨＧＨ）の改造方法を包含する。ヒト下垂体で分泌
されるＨＧＨのアイソフォームは、１９１個のアミノ酸からなり、そして約２１，５００
の分子量を有する。胎盤で作られるＨＧＨのアイソフォームはグリコシル化形である。Ｈ
ＧＨは、とりわけ一次成長（ｌｉｎｅａｒ ｇｒｏｗｔｈ）（体細胞発生）、哺乳期、マ
クロファージの活性化およびインスリン−様および糖尿病原性効果を含む正常なヒトの成
長および発生の調節に大いに関与している。

ＨＧＨは複雑なホルモンであり、そしてその効果は種々の細胞レセプターとの相互作用
の結果として変動する。ＨＧＨを含んでなる組成物は臨床的な状況、特に萎縮発育症で使
用されてきたが、効力は組換え的に生産されるＨＧＨのグリコシル化構造により制限され
ている。

ＨＧＨの核酸およびアミノ酸配列は、本明細書で配列番号４７および配列番号４８とし
ていたるところに説明する（それぞれ図７０Ａおよび７０Ｂ）。当業者はＨＧＨの変異体
、誘導体および突然変異体が周知であることを認識している。例は１０、１４、１８、２
１、１６７、１７１、１７４、１７６および１７９位のアミノ酸残基が置換されている米
国特許第６，１４３，５２３号明細書に見いだすことができ、そして米国特許第５，９６
２，４１１号明細書はＨＧＨのスプライス変異体を記載する。本発明は、当該技術分野で
知られている、またはこれから見いだされるこのようなＨＧＨ変異体を包含する。

組換え細胞中でのＨＧＨの発現法は、例えば米国特許第５，７９５，７４５号明細書に
記載されている。とりわけ原核、真核、昆虫細胞系、植物、およびインビトロ翻訳系での
ＨＧＨの発現法は、当該技術分野では周知である。

本発明の方法を使用して生産したＨＧＨ分子は、活性について当業者に知られてる様々
な方法を使用してアッセイすることができる。例えば米国特許第５，７３４ ０２４号明
細書は、発現したＨＧＨの生物学的機能を測定する方法を記載する。
Ｓ．抗体
本発明はさらに、キメラＴＮＦＲ、キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ、キメラ
抗−ＨＥＲ２、キメラ抗−ＲＳＶ、キメラ抗−ＣＤ２０およびキメラ抗−ＴＮＦを含む種
々のキメラ抗体調製物を改造する方法を含んでなる。キメラ抗体調製物は、ＩｇＧ抗体に
由来するヒトのＦｃ部分および抗原に特異的なモノクローナル抗体に由来する可変領域を
含んでなる。他の調製物はレセプター、例えばヒトＩｇＧＦｃ部分に融合した７５ｋＤａ
のＴＮＦレセプターを含んでなる。これらの分子はさらに、ヒトおよびマウスに由来する
軽および重鎖を含んでなるＦａｂフラグメントを含む。キメラＴＮＦＲは、慢性関節リウ
マチのような炎症性疾患の処置に有用である。キメラ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ
は、心臓異常、血液凝固および血小板機能障害の処置に有用である。キメラ抗−ＨＥＲ２
は胸部癌の処理として有用であり、キメラ抗−ＲＳＶは呼吸合胞体ウイルスの処理に有用
であり、キメラ抗−ＣＤ２０は非−ホジキンリンパ腫の処置に有用であり、そしてキメラ
抗−ＴＮＦはクローン病の処置に有用である。

これらのキメラ抗体は変動する疾患の管理に有用であることが示されたが、齧歯類細胞
で生産された組換えタンパク質の比較的短い半減期により、投与はかなり頻繁で、しかも
かなり高用量でなければならない。キメラ抗体のほとんどがヒトであり、したがって免疫
系により「自己」とみなされると同時に、それらは天然ではないグリコシル化パターン故
に分解、そして破壊される。本発明はこの問題を修復し、これら新規薬剤の効力を大いに
上昇させることを提案する。
抗体およびそれらの作成法
本明細書で使用する用語「抗体」は、抗原上の特異的なエピトープに特異的な結合する
ことができる免疫グロブリン分子を称する。抗体は天然な供給源に由来するか、または組
換え源に由来する完全な免疫グロブリンであることができ、そして完全な免疫グロブリン
の免疫反応性部分であることができる。抗体は典型的には免疫グロブリン分子の四量体で
ある。本発明の抗体は、例えばポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、Ｆｖ、Ｆａｂ
およびＦ（ａｂ）_２を含む種々の形態、ならびに一本鎖抗体およびヒト化抗体で存在する
ことができる（Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．，１９９９，抗体を使用して（Ｕｓｉｎｇ
Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ）：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバーラ
ボラトリー出版、ニューヨーク州；Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．，１９８９，抗体：ア
ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク；Ｈｏｕｓｔｏｎ
ｅｔ ａｌ．，１９８８，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８５：５８
７９−５８８３；Ｂｉｒｄ ｅｔ ａｌ．，１９８８，Ｓｃｉｅｎｃｅ２４２：４２３−
４２６）。

本明細書で使用する用語「合成抗体」とは、例えば本明細書に記載するバクテリオファ
ージにより発現された抗体のような組換えＤＮＡ技法を使用して作成された抗体を意味す
る。この用語は抗体をコードするＤＮＡ分子の合成により作成された抗体を意味すると解
釈され、そしてこのＤＮＡ分子が抗体ペプチドまたは抗体を特定するアミノ酸配列を発現
し、ここでＤＮＡまたはアミノ酸配列は当該技術分野で利用可能で、しかも周知な合成Ｄ
ＮＡまたはアミノ酸配列技法を使用して得られた。

ペプチドの完全長またはペプチドフラグメントまたはペプチドに対するモノクローナル
抗体は、例えばＨａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．（１９８８，抗体：ア ラボラトリーマニュ
アルで、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク州）、およびＴｕｓｚｙｎｋｉ ｅ
ｔ ａｌ．（１９８８，Ｂｌｏｏｄ，７２：１０９−１１５）に記載されているような周
知のモノクローナル抗体調製手順を使用して調製することができる。望ましいペプチドの
量は、化学的合成技法を使用しても合成することができる。あるいは所望するペプチドを
コードするＤＮＡをクローン化し、そして大量のペプチドを作成するために適する細胞中
で適当なプロモーター配列から発現させることができる。ペプチドに対するモノクローナ
ル抗体は、本明細書で参照にしたような標準的な手順を使用して、ペプチドで免疫感作し
たマウスから作成する。

本明細書に記載した手順を使用して得たモノクローナル抗体コードする核酸は、当該技
術分野で利用可能であり、そして例えばＷｒｉｇｈｔ ｅｔ ａｌ．（１９９２，Ｃｒｉ
ｔｉｃａｌ Ｒｅｖ．ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌ．１２（３，４）：１２５−１６８およびそ
こに引用されている参考文献に記載されている技術を使用してクローン化し、そして配列
決定することができる。さらに本発明の抗体はＷｒｉｇｈｔ ｅｔ ａｌ．，（同上）お
よびそこに引用されている参考文献、およびＧｕ ｅｔ ａｌ．（１９９７，Ｔｈｒｏｍ
ｂｏｓｉｓ ａｎｄ Ｈｅｍａｔｏｃｙｓｔ ７７（４）：７５５−７５９）に記載され
ている技術を使用して「ヒト化」することができる。

ファージ抗体ライブラリーを作成するために、ｃＤＮＡライブラリーを最初に細胞、例
えば発現すべき所望のペプチドを、例えば所望の抗体をファージ表面に発現するハイブリ
ドーマから単離したｍＲＮＡから得る。ｍＲＮＡのｃＤＮＡコピーを逆転写酵素により生
産する。免疫グロブリンフラグメントを特定するｃＤＮＡはＰＣＲにより得、そして生成
したＤＮＡを適当なバクテリオファージベクターにクローン化して、免疫グロブリン遺伝
子を特定するＤＮＡを含んでなるバクテリオファージのＤＮＡライブラリーを作成する。
ヘテロロガスなＤＮＡを含んでなるバクテリオファージのライブラリーを作成する手順は
当該技術分野では周知であり、そして例えばＳａｍｂｒｏｏｋ ａｎｄ Ｒｕｓｓｅｌｌ
（２００１、モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリ
ングハーバー、ニューヨーク州）に記載されている。

所望する抗体をコードするバクテリオファージは、その対応する結合ペプチド、例えば
抗体が向けられる抗原に結合できる様式で、ペプチドがその表面上で表示されるように工
作することができる。このように特異的な抗体を発現するバクテリオファージが対応する
抗原を発現する細胞の存在下でインキューベーションされる時、バクテリオファージは細
胞に結合するだろう。抗体を発現しないバクテリオファージは細胞に結合しない。そのよ
うな難しい（ｐａｎｎｉｎｇ）技術は当該技術分野では周知であり、そして例えばＷｒｉ
ｇｈｔ ｅｔ ａｌ．，（同上）に記載されている。

上記のような方法はＭ１３バクテリオファージ表示を使用してヒト抗体を生産するため
に開発された（Ｂｕｒｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，１９９４，Ａｄｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．５７
：１９１−２８０）。本質的に、ｃＤＮＡライブラリーは抗体−生産細胞の１群から得た
ｍＲＮＡから作成する。ｍＲＮＡは再配列した免疫グロブリン遺伝子をコードし、そして
すなわちｃＤＮＡはそれをコードする。増幅したｃＤＮＡをＭ１３発現ベクターにクロー
ン化して、表面上にヒト抗体フラグメントを発現するファージのライブラリーを作成する
。問題の抗体を表示するファージは抗原の結合により選択し、そして細菌中で増殖させて
可溶性のヒト免疫グロブリンを生産させる。このように従来のモノクローナル抗体合成と
は対照的に、この手順はヒト免疫グロブリンを発現する細胞ではなくヒト免疫グロブリン
をコードするＤＮＡを不滅化する。
抗体分子のグリカンの改造
ペプチドの１クラス、すなわち免疫グロブリンの特異的なグリコシル化は、これらペプ
チドの生物学的活性に特に重要な効果を有する。本発明はＩｇＧクラスの免疫グロブリン
のみに限定されると解釈すべきではなく、抗体のＩｇＡ、ＩｇＥおよびＩｇＭクラスの免
疫グロブリンも含むと解釈すべきである。

さらに本発明は任意の型の伝統的な抗体構造のみに限定されると解釈すべきではない。
むしろ本発明は例えば抗体のフラグメント、キメラ抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体等を含む
すべての型の抗体分子を含むと解釈すべきである。

典型的な免疫グロブリン分子は、エフェクタータンパク質および抗原結合部分を含んで
なる。免疫グロブリンの総説に関しては、；Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．，１９８８，抗
体：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク、および
Ｈａｒｌｏｗ ｅｔ ａｌ．，１９９９，抗体を使用して：ア ラボラトリーマニュアル
、コールドスプリングハーバーラボラトリー出版、ニューヨーク州を参照にされたい。免
疫グロブリン分子のエフェクター部分は分子のＦｃ部分に存在し、そして免疫グロブリン
のそのコグネイト細胞レセプターへの効率的結合に一部、寄与している。免疫グロブリン
分子、特に分子のＦｃ部分のＣＨ２ドメイン中の不適切なグリコシル化は、免疫グロブリ
ンの生物学的活性に影響を及ぼす。

免疫グロブリンＩｇＧに関してさらに具体的には、ＩｇＧエフェクター機能は大部分、
ＩｇＧがＩｇＧ分子のＣＨ２ドメイン中のアスパラギン（Ａｓｎ）２９７でＮ−グルカン
のトリマンノシルコアの分岐マンノースの４−Ｏ位に結合したＮ−アセルチルグルコサミ
ン（ＧｌｃＮＡｃ）残基を含むか否かに支配されている。この残基は「バイセクティング
（ｂｉｓｅｃｔｉｎｇ）ＧｌｃＮＡｃ」として知られている。バイセクティングＧｌｃＮ
Ａｃを天然なまたは組換えＩｇＧ分子もしくはＩｇＧ−Ｆｃ含有キメラ構築物のＮ−グリ
カン鎖に加える目的は、分子のＦｃ部分のＦｃ免疫エフェクター機能を至適化することに
ある。そのようなエフェクター機能には、抗体−依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）およびＦｃ
γＲレセプターへの効率的結合を必要とする他の生物学的効果、および補体のＣ１成分へ
の結合を含むことができる。ＩｇＧ分子の最大の免疫エフェクター機能を達成するために
、バイセクティングＧｌｃＮＡｃの重要性が記載された（Ｌｉｆｅｌｙ ｅｔ ａｌ．，
１９９５，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ ５（８）：８１３−８２２；Ｊｅｆｆｒｉｓ ｅ
ｔ ａｌ．，１９９０，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．２６８（３）：５２９−５３７）。

ＩｇＧ分子のＣＨ２ドメインのＡｓｎ２９７のＮ−グリコシル化部位に見いだされるグ
リカンは、ヒトおよび動物血漿中で循環中していることが分かったＩｇＧ分子、骨髄腫細
胞、ハイブリドーマ細胞および種々のトランスフェクトされた不死化哺乳動物および昆虫
細胞系により生産されるＩｇＧについて構造的に特性が決定された。すべての場合でＮ−
グリカンは高マンノース鎖または完全（Ｍａｎ３、ＧｌｃＮＡｃ４、Ｇａｌ２、ＮｅｕＡ
ｃ２、Ｆｕｃｌ）またはバイセクティングＧｌｃＮＡｃを持つか持たない可変性の不完全
な２アンテナ鎖のいずれかである（Ｒａｊｕ ｅｔ ａｌ．，２０００，Ｇｌｙｃｏｂｉ
ｏｌｏｇｙ １０（５）：４７７−４８６；Ｊｅｆｆｒｉｓ ｅｔ ａｌ．，１９９８，
Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ．Ｒｅｖ．１６３Ｌ５９−７６；Ｌｅｒｏｕｇｅ ｅｔ ａ
ｌ．，１９９８，Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３８：３１−４８；Ｊａｍｅｓ ｅｔ
ａｌ．，１９９５，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ１３：５９２−５９６）。

本発明はインビトロでカスタマイズされたグリコシル化免疫グロブリン分子を提供する
。免疫グロブリン分子は限定するわけではないが、モノクローナル抗体、合成抗体、キメ
ラ抗体、ヒト化抗体等を含む任意の免疫グロブリン分子でよい。抗体分子を生成し、そし
てそれらを特徴付けるための具体的方法は、本明細書のいたるところに記載する。好まし
くは免疫グロブリンはＩｇＧであり、そしてより好ましくはＩｇＧはヒト化またはヒトＩ
ｇＧ、最も好ましくはＩｇＧ１である。

本発明は、Ｎ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）をＩｇＧ分子のＣＨ２ドメイン
のＡｓｎ２９７でＮ−グリカンのトリマンノシルコアの分岐マンノースの４−Ｏ位にグリ
コシド結合で連結するために、インビトロの試薬としてβ１，４−マンノシル−糖ペプチ
ドβ１，４−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ、ＧｎＴ−ＩＩＩ：ＥＣ２．４
．１．１４４を使用することを具体的に意図している。しかし本明細書に提供される開示
から、本発明がバイセクティングＧｌｃＮＡｃを免疫グロブリン分子に提供するためにこ
の酵素の使用だけを含むと解釈すべきではないことは明らかである。むしろ抗体分子のグ
リコシル化パターンは、抗体分子が強化された生物学的活性、すなわち他の特性、例えば
安定性等の強化の可能性に加えて、エフェクター機能を有するように調節することが可能
であることが見いだされた。

本発明では、Ｆｃ−ガンマＲＩＩＩＡへの結合を強化し、そして強化された抗体−依存
性細胞傷害性を目的として、Ａｓｎ（２９７）Ｎ−結合グリカンからフコース分子を除去
する一般的方法を提供する（Ｓｈｉｅｌｄｓ ｅｔ ａｌ．，２００２，Ｊ．Ｂｉｏｌ．
Ｃｈｅｍ．２７７：２６７３３−２６７４０を参照にされたい）。この方法は抗体分子を
、抗体グリカン（１つまたは複数）上のフコース分子（１つまたは複数）の結合に適当な
フコシダーゼと接触させることを必要とする。あるいは組換え抗体を、ＣＨＯ細胞のＬｅ
ｃ１３変異体のようなフコシルトランスフェラーゼを発現する細胞で発現させることがで
きる。抗体のグリカン（１つまたは複数）からのフコースの除去は単独で、あるいはバイ
セクティングＧｌｃＮＡｃを付加するような他のグリカン改造方法と組み合わせて行うこ
とができる。ＧｎＴ−Ｉを欠く細胞中での抗体の発現もコアフコースを欠いたＦｃグリカ
ンを生成し、これは本発明によりさらに修飾することができる。

本発明では、ＣＨ２ドメイン中、多くはＡｓｎ２９７でＮ−結合オリゴ糖を含むＩｇＧ
分子の調製物において、Ｆｃ免疫エフェクター機能を強化する目的で、バイセクティング
ＧｌｃＮＡｃの一般的導入法を提供する。この方法ではＩｇＧ分子の群は、グリカン鎖が
ＧｎＴ−ＩＩＩの受容体となるようなグリコシル化の状態になることが必要である。これ
は３つの方法の任意の１つにより達成される：１）ＧｎＴ−ＩＩＩの基質であるＮ−グリ
カン鎖を持つＩｇＧを分泌する宿主発現系の選択または遺伝子操作による；２）エキソグ
リコシダーゼ処理後に残るグリカン構造（１つまたは複数）がＧｎＴ−ＩＩＩの受容体と
なるような、ＩｇＧグリコフォーム群をエキソグリコシダーゼで処理することによる；３
）上記１）および２）におけるような宿主選択およびエキソグリコシダーゼ処理の幾つか
の組み合わせに加えて、ＧｎＴ−ＩＩＩの受容体を作成するためにＧｎＴ−ＩおよびＧｎ
Ｔ−ＩＩによる連続的なＧｌｃＮＡｃの付加。

例えばニワトリの血漿から得たＩｇＧは主に高マンノース鎖を含有し、そしてＧｌｃＮ
Ａｃをトリマンノシルコアのα１，３マンノース枝にＧｎＴ−Ｉにより付加するための基
質を作成するためには、１以上のα−マンノシダーゼで消化する必要がある。この基質は
基本的なトリマンノシルコア、Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２であることができる。このコア構
造をＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを糖供与体として使用して、ＧｎＴ−Ｉ、続いてＧｎＴ−ＩＩ
、続いてＧｎＴ−ＩＩＩで順次処理することにより、図２に示すようなＭａｎ３ＧｌｃＮ
Ａｃ５を生成する。場合によりこの構造はβ１，４ガラクトシルトランスフェラーゼを用
いた処理により延長することができる。必要ならばガラクトシル化オリゴ糖は、α２，３
−またはα２，６−シアリルトランスフェラーゼを用いてさらに延長して、完全な２アン
テナ状構造を達成することができる。この方法を使用して、２アンテナ状グリカン鎖は、
開発中の任意の治療用ＩｇＧの最適なＦｃ免疫エフェクター機能に必要性であるように改
造することができる（図４）。

あるいはほとんどの動物の血漿中に見いだされるＩｇＧ分子、またはほとんどの動物細
胞によるもしくはトランスジェニック動物による組換え産物として分泌されるＩｇＧは、
多くは完全な（ＮｅｕＡｃ２、Ｇａｌ２、ＧｌｃＮＡｃ４、Ｍａｎ３、±Ｆｕｃｌ）（図
４）およびバイセクティングＧｌｃＮＡｃを含むかまたは含まない変動性の不完全な形態
を含む２アンテナ状グリコフォームのスペクトルを含む（Ｒａｊｕ ｅｔ ａｌ．，２０
００，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ １０（５）：４７７−４８６；Ｊｅｆｆｒｉｓ ｅｔ
ａｌ．，１９９８，Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｖ．１６３：５９−７６）。バ
イセクティングＧｌｃＮＡｃがそのように生産された免疫グロブリン分子の群全体に存在
することを確実とするために、分子の混合物を以下のエキソグリコシダーゼと連続的に、
または混合物で処理することができる：ノイラミニダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、β−
グルコサミニダーゼ、α−フコシダーゼ。生成したトリマンノシルコアは次いで上記のよ
うにグリコシルトランスフェラーゼを使用して改造することができる。

さらにトランスジェニック動物により分泌されるか、またはトランスジェニック植物に
より「植物体」として貯蔵されるＩｇＧを特性決定した。β１，２結合キシロースおよび
／またはα１，３結合フコースを含むＮ−グリカンを有するトランスジェニック植物中で
生産されるＩｇＧ分子は、トリマンノシルコアまたはＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ４構造を作成
するために上記エキソグリコシダーゼに加えて、エキソグリコシダーゼで処理してそれら
残基を除去することができ、次いでそれらをグリコシルトランスフェラーゼで処理して上
記のようにＮ−グリカンを改造する。

本発明の主な新規観点は、事前のエキソグリコシダーゼ処理を含むか、または含まずに
、抗体のエフェクター機能を至適化するために正しい順序で適用される、適切なグリコシ
ルトランスフェラーゼの適用である。１つの例示態様では、バイセクティングＧｌｃＮＡ
ｃは、バイセクティングＧｌｃＮＡｃが必要なＩｇＧ分子または他のＩｇＧ−Ｆｃ−キメ
ラ構築物のグリカンに導入される。別の例示態様では、コアフコースがＩｇＧ分子または
他のＩｇＧ−Ｆｃ−キメラ構築物のグリカンから除去される。
ＴＮＦレセプター−ＩｇＧ Ｆｃ融合タンパク質
７５ｋＤａのヒトＴＮＦレセプターのヌクレオチドおよびアミノ酸配列を、本明細書で
それぞれ配列番号３１および配列番号３２として説明する（それぞれ図７１Ａおよび７１
Ｂ）。キメラ抗−ＨＥＲ２の軽および重可変領域のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３
５および配列番号３６として説明する（それぞれ図７２Ａおよび７２Ｂ）。キメラ抗−Ｒ
ＳＶの軽および重可変領域のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３８および配列番号３７
として説明する（それぞれ図７３Ａおよび７３Ｂ）。抗−ＴＮＦの非−ヒト可変領域のア
ミノ酸配列を、本明細書中でそれぞれ配列番号４１および配列番号４２として説明する（
それぞれ図７４Ａおよび７４Ｂ）。ヒトＩｇＧのＦｃ部分のヌクレオチドおよびアミノ酸
配列を、配列番号４９および配列番号５０として説明する（それぞれ図７５Ａおよび７５
Ｂ）。
ＭＡｂ抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ
マウス抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗体の可変領域のアミノ酸配列を、配列番号
５２（マウス成熟可変軽鎖、図７６）および配列番号５４（マウス成熟可変重鎖、図７７
）で説明する。これらのマウス配列は、米国特許第５，７７７．０８５号明細書に見いだ
される手順に従い、ヒトＩｇＧアミノ酸配列の配列番号５１（ヒト成熟可変軽鎖、図７８
）、配列番号５３（ヒト成熟可変重鎖、図７９）、配列番号５５（ヒト軽鎖、図８０）お
よび配列番号５６（ヒト重鎖、図８１）と組み合わせて、キメラヒト化マウス抗−糖タン
パク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ抗体を作成することができる。他の抗−糖タンパク質ＩＩｂ／Ｉ
ＩＩａヒト化抗体は、米国特許第５，８７７，００６号明細書に見いだされる。抗−糖タ
ンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ ＭＡｂ ７Ｅ３を発現する細胞系は、ＡＴＣＣ（マナッサス
、バージニア州）から寄託番号ＨＢ−８８３２で商業的に得ることができる。
ＭＡｂ抗−ＣＤ２０
キメラ抗−ＣＤ２０抗体の核酸およびアミノ酸配列は、配列番号５９（マウス可変領域
軽鎖の核酸配列、図８２Ａ）、配列番号６０（マウス可変領域軽鎖のアミノ酸配列、図８
２Ｂ）、配列番号６１（マウス可変領域重鎖の核酸配列、図８３Ａ）および配列番号６２
（マウス可変領域重鎖のアミノ酸配列、図８３Ｂ）に説明する。マウス抗体をヒト化する
ために、ヒトＩｇＧ重および軽定常ドメインを含むＴＣＡＥ８（配列番号５７、図８４Ａ
−８４Ｅ）を都合よく使用することができる。上記マウス可変領域コードＤＮＡを、米国
特許第５，７３６，１３７号明細書に与えられた使用説明に従いＴＣＡＥ８ベクターにク
ローニングすることにより、哺乳動物細胞系で形質転換した時、キメラ抗−ＣＤ２０抗体
を発現するベクターが作成される（配列番号５８、図８５Ａ−８５Ｅ）。他のヒト化抗−
ＣＤ２０抗体は、米国特許第６，１２０，７６７号明細書に見いだされる。抗−ＣＤ２０
ＭＡｂ Ｃ２７３を発現する細胞系は、ＡＴＣＣ（マナッサス、バージニア州）から寄託
番号ＨＢ−９３０３で商業的に得ることができる。

当業者は本明細書中で説明する配列が網羅的ではなく、むしろ可変領域、レセプターお
よび他のキメラ抗体の結合部分の例であると直ちに考えるだろう。さらにキメラまたは「
ヒト化」抗体を構築するための方法は当該技術分野では周知であり、そして例えば米国特
許第６，３２９，５１１号および同第６，２１０，６７１号明細書に記載されている。本
開示および当該技術分野を通して周知な方法と組み合わせて、当業者は本発明が本明細書
に開示した配列に限定されないことを認識するだろう。

キメラ抗体の発現は当該技術分野では周知であり、そして例えば米国特許第６，３２９
，５１１号明細書に詳細に記載されている。発現系は原核、真核等であることができる。
さらにバキュロウイルス発現系を使用した昆虫細胞でのキメラ抗体の発現が、Ｐｕｔｌｉ
ｔｚ ｅｔ ａｌ．（１９９０．Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ８：６５１−６５４）
に記載されている。したがって融合またはキメラタンパク質をコードする核酸の発現法は
当該技術分野では周知であり、そして例えばＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．（２００１
、モレキュラークローニング：ア ラボラトリーマニュアル、コールドスプリングハーバ
ーラボラトリー出版、ニューヨーク）およびＡｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．（１９９７、
分子生物学の現在のプロトコール、グリーン＆ウィリー、ニューヨーク）に記載されてい
る。

本発明の方法に従い生産されたキメラ抗体の機能および生物学的活性の測定は、当業者
には同様に基本的操作である。競合アッセイによる抗体の親和性を決定する方法は、Ｂｅ
ｒｚｏｆｓｋｙ（Ｊ．Ａ．Ｂｅｒｚｏｆｓｋｙ ａｎｄ Ｉ．Ｊ．Ｂｅｒｋｏｗｅｒ、１
９８４、基本的免疫学（Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ）、（Ｗ．Ｅ．
Ｐａｕｌ編集）、ラベン（Ｒａｖｅｎ）出版（ニューヨーク）、５９５）に詳細に記載さ
れている。簡単に説明すると、キメラ抗体の親和性はそれが由来するモノクローナル抗体
の親和性と、放射−ヨード化モノクローナル抗体を使用して比較する。
ＶＩＩ．製薬学的組成物
別の観点では、本発明は製薬学的組成物を提供する。製薬学的組成物には、製薬学的に
許容され得る希釈剤および天然には存在しない、水溶性ポリマー、治療部分または生体分
子とグリコシル化または非グリコシル化ペプチドとの間の共有結合物を含む。ポリマー、
治療部分または生体分子は、ペプチドとポリマー、治療部分または生体分子との間に挿入
され、そして両方を共有結合する完全なグリコシル連結基を介してペプチドに結合される
。

本発明の製薬学的組成物は様々な薬剤送達系での使用に適している。本発明での使用に
適する製剤は、レミングトンの製薬科学（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕ
ｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ）、メース（Ｍａｃｅ）出版社、フィラデルフィア、ペンシ
ルバニア州、第１７版、（１９８５）に見いだせる。薬剤送達に関する方法の簡単な総説
については、Ｌａｎｇｅｒ，Ｓｃｉｅｎｃｅ２４９：１５２７−１５３３（１９９０）を
参照にされたい。

製薬学的組成物は、例えば局所、経口、鼻、静脈内、頭蓋内、腹腔内、皮下または筋肉
内を含む任意の適切な投与様式に配合することができる。皮下注射のような非経口投与に
は、担体は好ましくは水、塩水、アルコール、脂肪、蝋またはバッファーを含んでなる。
経口投与には任意の上記の担体またはマンニトール、ラクトース、澱粉、ステアリン酸マ
グネシウム、サッカリンナトリウム、タルク、セルロース、グルコース、シュクロースお
よび炭酸マグネシウムのような固体担体を使用することができる。生分解性微小球（例え
ばポリラクテートポリグリコレート）を本発明の製薬学的組成物に担体として使用するこ
ともできる。適当な生分解性微小球は、例えば米国特許第４，８９７，２６８号および同
第５，０７５，１０９号明細書に開示されている。

一般に製薬学的組成物は非経口的、例えば静脈内に投与される。すなわち本発明は許容
されうる担体、好ましくは水性担体、例えば水、緩衝化水、塩水、ＰＢＳ等に溶解または
懸濁された化合物を含んでなる非経口投与用の組成物を提供する。組成物はｐＨ調整およ
び緩衝化剤、張性調節剤、湿潤剤、界面活性剤等のような生理学的状態に近づけるため必
要な製薬学的に許容され得る補助物質を含むことができる。

これらの組成物は通例の滅菌技術により滅菌することができ、または滅菌濾過してもよ
い。生成した水溶液はそのまま使用するために包装されることができ、または凍結乾燥さ
れ、凍結乾燥された調製物は滅菌水性担体と投与前に合わせられる。調製物のｐＨは典型
的には３から１１の間、より好ましくは５から９、そして最も好ましくは７から８である
。

幾つかの態様では、本発明のペプチドは標準的な小胞−形成脂質から形成されたリポソ
ームに包含することができる。様々な方法が、例えばＳｚｏｋａ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ
．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｙｓ．Ｂｉｏｅｎｇ．９：４６７（１９８０）、米国特許第４，２３
５，８７１号、同第４，５０１，７２８号および同第４，８３７，０２８号明細書に記載
されているようにリポソームを調製するために利用可能である。様々な標的化剤（例えば
本発明のシアリルガラクトシド）を使用したリポソームの標的化は当該技術分野で周知で
ある（例えば米国特許第４，９５７，７７３号および同第４，６０３，０４４号明細書を
参照にされたい）。

標的化剤をリポソームにカップリングする標準的な方法を使用することができる。これ
らの方法は一般に、標的化剤の結合を活性化することができるホスファチジルエタノール
アミンのような脂質成分、または本発明の脂質−誘導化ペプチドのような誘導化された親
油性化合物のリポソームへの包含が関与する。

標的化メカニズムは一般に、標的部分が標的、例えば細胞表面レセプターとの相互作用
に利用できるような様式で、標的化剤をリポソームの表面上に配置することが必要である
。本発明の炭水化物は当業者に既知の方法（例えば炭水化物上に存在するヒドロキシル基
の、長鎖アルキルハライドまたは脂肪酸を用いたそれぞれアルキル化またはアシル化）を
使用して、リポソームが形成される前に脂質分子に結合することができる。あるいはリポ
ソームはコネクター部分を最初に、膜を形成する時点で膜に包含させるような様式に工夫
することができる。コネクター部分は親油性部分を持たなければならず、コネクター部分
は膜中に堅く包埋され、そしてしっかり固定される。これはまた反応性部分を持たなけれ
ばならず、反応性部分はリポソームの水性表面上で化学的に利用可能である。反応性部分
はこれが安定な化学結合を後に加える標的化剤または炭水化物と形成するために、化学的
に適するように選択される。場合により標的剤をコネクター分子に直接付けることも可能
であるが、ほとんどの場合で化学的ブリッジとして作用するための第３分子を使用するこ
とが適当であり、すなわち膜中にあるコネクター分子を、３次元的に小胞表面から離れて
伸びる標的剤または炭水化物に連結する。本発明のペプチドの投与の投薬範囲は、免疫応
答の症状がある程度の抑制を示す、所望する効果を生じるために十分に多い量である。投
薬用量は副作用を引き起こすほど多くてはならない。一般に投薬用量は動物の年齢、状態
、性別および疾患の程度で変動し、そして当業者により決定され得る。投薬用量は反対の
徴候の出来事で、個々の医師により調整されることができる。

さらなる製薬学的方法を使用して、作用期間を制御することができる。放出制御調製物
は、結合物に対するポリマーの使用、複合体、またはペプチドの吸収により達成すること
ができる。制御された送達は、適当な高分子（例えばポリエステル、ポリアミノカルボキ
シメチルセルロースおよび硫酸プロタミン）および高分子の濃度ならびに放出を制御する
ための包含法を選択することにより果たすことができる。放出制御調製物により作用期間
を制御するための別の可能な方法は、ペプチドをポリエステル、ポリアミノ酸、ヒドロゲ
ル、ポリ（乳酸）またはエチレンビニル酢酸コポリマーのようなポリマー性材料の粒子に
包含させることである。

ペプチドを血漿タンパク質の結合から保護するために、ペプチドはコアセルベーション
法により、または界面重合法により調製したマイクロカプセル、例えばそれぞれヒドロキ
シメチルセルロースまたはゼラチン−マイクロカプセルおよびポリ（メチメタクリレート
）マイクロカプセルに、あるいはコロイド状薬剤送達系、例えばリポソーム、アルブミン
微小球、ミクロエマルジョン、ナノ粒子およびナノカプセルに、またはマクロエマルジョ
ンに封入することが好適である。そのような教示は、レミングトンの製薬科学（第１６版
、Ａ．Ｏｓｌｏ編集、マック、イーストン、ペンシルバニア州、１９８０）に開示されて
いる。

本発明のペプチドは、高分子量複合体、ナノカプセル、微小球またはビーズ状の合成ま
たは天然のポリマー、および水中油型のエマルジョン、ミセル、混合ミセル、リポソーム
および再封入赤血球（ｒｅｓｅａｌｅｓ ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ）を含む脂質に基づく
系、のような標的可能な薬剤送達系での使用によく適している。これらの系は集合的にコ
ロイド状薬剤送達系として知られている。典型的にはそのような分散したペプチドを含有
するコロイド状粒子は、直径約５０ｎｍ〜２μｍである。コロイド状粒子のサイズは、そ
れらが注射によるように静脈内に、またはエーロゾルとして投与できるようにする。コロ
イド系の調製物に使用する材料は典型的には、濾過滅菌を介して滅菌可能な、非毒性の、
生分解可能な、例えばアルブミン、エチルセルロース、カゼイン、ゼラチン、レシチン、
リン脂質およびダイズ油である。ポリマー性のコロイド系はマイクロカプセル化のコアセ
ルベーションに類似する方法により調製される。

例示態様では、ペプチドは標的化送達系として使用するリポソームの成分である。リン
脂質が水性媒質にゆるやかに分散した時、それらは膨潤し、水和し、そして脂質二重層を
分ける水性媒質の層を含むマルチラメラ同心二重層小胞（ｍｕｌｔｉｌａｍｅｌｌａｒ
ｃｏｎｃｅｎｔｒｉｃ ｂｉｌａｙｅｒ ｖｅｓｉｃｌｅ）を天然に形成する。そのよう
な系は通常、多重層リポソームまたは多重層小胞（ＭＬＶ）と呼ばれ、そして約１００ｎ
ｍから約４μｍの範囲の直径を有する。ＭＬＶが超音波処理される時、直径が約２０〜約
５０ｎｍの範囲の小１枚膜リポソーム（ＳＵＶＳ）が形成され、これはＳＵＶのコアに水
溶液を含む。

リポソーム生成に有用な脂質の例には、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジル
コリン、ホスファチジルセリンおよびホスファチジルエタノールアミンのようなホスファ
チジル化合物を含む。特に有用であるのは、ジアシルホスファチジルグリセロールであり
、ここで脂質部分は１４〜１８個の炭素原子、特に１６〜１８個の炭素原子を含み、そし
て飽和されている。具体的例のリン脂質には卵のホスファチジルコリン、ジパルミトイル
ホスファチジルコリンおよびジステアロイルホスファチジルコリンを含む。

本発明のペプチドを含有するリポソームの調製では、ペプチドのカプセル化効率、ペプ
チドの不安定性（ｌａｂｉｌｉｔｙ）、生成されるリポソーム群の均一性およびサイズ、
ペプチド−対−脂質比、調製物の浸透不安定性、および製剤の製薬学的な許容性のような
変数を考慮すべきである。Ｓｚｏｋａ，ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｏ
ｆ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ ａｎｄ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，９：４６７（１９
８０）；Ｄｅａｍｅｒ，ｅｔ ａｌ．，リポソーム（ＬＩＰＯＳＯＭＥ）で、マルセルデ
ッカー、ニューヨーク、１９８３、２７：Ｈｏｐｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｐｈｙｓ
．Ｌｉｐｉｄｓ，４０：８９（１９８６）。

本発明のペプチドを含有する標的化送達系は、宿主、特に哺乳動物宿主に、静脈内、筋
肉内、皮下、腹腔内、血管内、局所的、空隙内、経皮的、鼻内、および吸入のような種々
の方法で投与することができる。ペプチドの濃度は特定の応用、疾患の性質、投与頻度等
により変動するだろう。標的化送達系−カプセル化ペプチドは、適当な他の化合物および
水性の生理学的に許容され得る媒体、例えば塩水、リン酸緩衝化生理食塩水等を含んでな
る製剤で提供され得る。

本発明の方法により調製された化合物は、診断試薬としても使用を見いだすことができ
る。例えば標識した化合物は炎症を有することが疑われる患者の炎症または腫瘍の転移の
領域を決めるために使用することができる。この使用のために、化合物は^１２５Ｉ、^１４
Ｃまたはトリチウムで標識することができる。
実験例
本発明をこれから以下の実施例を参照にして記載する。これらの実施例は具体的説明の
目的のみに提供し、そして本発明がこれらの実施例に限定されるべきでは全くなく、むし
ろ本明細書に提供する教示の結果として明らかになるありとあらゆる変更を包含すると解
釈すべきである。
Ａ．グリコシル化
この実施例で提示するこの実験に使用する材料および方法をこれから記載する。
１．ＴＰ１０のシアリル化およびフコシル化
この実施例は、シアリルルイスＸ部分を用いたＴＰ１０の調製および強化された生物学
的活性の分析を説明する。

脳への血流を妨害することはたとえ短時間でも、大脳組織傷害を悪化させ得る大脳の微
小血管内に炎症性の反応を誘発する可能性がある。天然に生じる組織傷害は、炎症および
凝固カスケードの両方の活性化により増幅する。発作のマウスモデルでは、Ｐ−セレクチ
ンおよびＩＣＡＭ−１の発現増加が白血球の動員（ｒｅｃｒｕｉｔｍｅｎｔ）を促進する
。ｓＣＲ１は補体受容体−１（ＣＲ−１）の細胞外ドメインの組換え形である。ｓＣＲ−
１は補体活性化の有力なインヒビターである。ｓＣＲ１ｓＬｅ^Ｘ（ＣＤ２０）は、選択的
に（ａｌｔｅｒｎａｔｅｌｙ）グリコシル化されてシアリル化ルイス^Ｘ抗原を表示する選
択的にグリコシル化されたｓＣＲ１形態である。以前は、工作されたＬｅｃ１１ ＣＨＯ
細胞中でインビボで発現され、そしてグリコシル化されたｓＣＲ−１ｓＬｅＸが虚血性の
大脳微小血管およびＣ１ｑ−発現ニューロンに正しく局在することが見いだされ、これに
より好中球および血小板の蓄積を阻害し、そして大脳の梗塞容量を減少させた（Ｈｕａｎ
ｇ ｅｔ ａｌ．，１９９９，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２８５：５９５−５９９）。本実施例で
は、グリカンを改造することによりインビトロで調製されたｓＣＲ１ｓＬｅ^Ｘが、インビ
ボでグリコシル化されたｓＣＲｓＬｅ^Ｘと同様の強化された生物学的活性を現した。

ＴＰ１０ペプチドはＤＵＫ Ｂ１１ ＣＨＯ細胞で発現された。このＣＨＯ細胞系は典
型的なＣＨＯ細胞のグリコシル化を有するＴＰ１０ペプチドを生産し、すべてではないが
多くのグリカンがシアル酸でキャップされている。

６６ｍｇのＴＰ１０のシアリル化。ＴＰ１０（２．５ｍｇ／ｍＬ）、ＣＭＰＳＡ（５ｍ
Ｍ）およびＳＴ３Ｇａｌ３（０．１Ｕ／ｍＬ）を３２℃で、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．１
５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％アジ化ナトリウム、ｐＨ７．２中で４８時間、インキューベ
ーションした。放射性標識したＣＭＰシアル酸を少量のアリコートに加えて取り込みを監
視した。ＴＰ１０はＳＥＣ ＨＰＬＣによりヌクレオチド糖から分離した。２４時間およ
び４８時間で分析したサンプルは、反応が２４時間後には完了したことを示した。次いで
反応混合物を凍結した。反応生成物をフルオロフォア支援炭水化物電気泳動（Ｆｌｕｏｒ
ｏｐｈｏｒｅ Ａｓｓｉｓｔｅｄ Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒ
ｅｓｉｓ）（ＦＡＣＥ（商標）；グリコ社、ノバト、カリフォルニア州）分析にかけた（
図８６）。

薬物動態学的実験。ラットは頸動脈カニューレと購入した。１０ｍｇ／ｋｇの前シアリ
ル化または後シアリル化ＴＰ１０ペプチドは、各処置で（ｎ＝３）尾の静脈注射を介して
３匹のラットに与えた。１４の血液サンプルを０〜５０時間で採血した。血液中の後シア
リル化ＴＰ１０ペプチドの濃度は、前シアリル化ＴＰ１０よりも０時間以降、いつも高か
った（図８７）。シアル酸の付加は出発原料に比べて、薬物動態学的曲線の血漿濃度−時
間曲線下の面積（ＡＵＣ）を二倍にした（図８８）。

シアリル化ＴＰ１０のフコシル化。上記シアリル化ミックスの１０ｍＬ（２５ｍｇのＴ
Ｐ１０）を解凍し、そしてＧＤＰ−フコースを５ｍＭまで、ＭｎＣｌ_２を５ｍＭまで、そ
してＦＴＶＩ（フコシルトランスフェラーゼ）を０．０５Ｕ／ｍＬまで加えた。反応物は
３２℃で４８時間インキューベーションした。反応生成物をフルオロフォア支援炭水化物
電気泳動（（ＦＡＣＥ（商標）；グリコ社、ノバト、カリフォルニア州）分析にかけた（
図８９）。少量のアリコートに放射性標識したＧＤＰ−フコースを加え、取り込みを監視
した。ＴＰ１０はＳＥＣ ＨＰＬＣによりヌクレオチド糖から分離した。２４時間および
４８時間で分析したサンプルは、反応が２４時間後には完了したことを示した。Ｅ−セレ
クチンへの結合を測定するインビトロアッセイは、フコースの付加が生物学的に活性なＥ
−セレクチンリガンドを生成できることを示す（図９０）。
２．組換え糖タンパク質のシアリル化
この実施例では、数種の組換えペプチドのシアリル化形態の調製を説明する。

ＳＴ３ＧａｌＩＩＩを使用した組換え糖タンパク質のシアリル化。数種の糖タンパク質
はそれらが組換えラットＳＴ３ＧａｌＩＩＩによりシアリル化される能力について調査さ
れた。これら各々の糖タンパク質について、シアリル化は市販品としての各糖タンパク質
の開発において、貴重な方法となるであろう。

反応条件。反応条件は表９にまとめた。シアリルトランスフェラーゼ反応は室温から３
７℃の間の温度で２４時間行った。シアリル化の程度は糖タンパク質−結合オリゴ糖に取
り込まれた^１４Ｃ−ＮｅｕＡｃの量を測定することにより確立した。各タンパク質に関す
る反応条件については表９を参照にされたい。

^１「サイクル」は明細書に記載した標準的条件を使用した酵素的な「その場」でのＣＭＰ
−ＮｅｕＡｃの生成を指す（２０ｍＭ ＮｅｕＡｃおよび２ｍＭ ＣＭＰ）。バッファー
は０．１Ｍ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．５であった。

表１０に表す結果は、低レベルの酵素を使用したにもかかわらず、顕著な程度のシアリ
ル化が各々の場合で達成されたことを示す。本質的に利用可能な末端ガラクトースの推定
に基づき、完全なシアリル化が得られた。表１０はシアリル化反応の結果を示す。様々な
実験を比較する基礎として、１ｍｇのタンパク質あたり酵素量を使用した（ｍＵ／ｍｇ）
。示す幾つかの実施例では、ｍｇのタンパク質あたりわずか７〜１３ｍＵのＳＴ３Ｇａｌ
ＩＩＩが２４時間後に本質的に完全なシアリル化を与えるために必要であった。

^１供給元、または文献値（フェチュイン、アシアロ−ＡＡＡＴ）から決定されたＮ−結合
オリゴ糖上の末端（露出）Ｇａｌ含量。
^２遊離放射性標識前駆体からゲル濾過により分離した後に、１４Ｃ−ＮｅｕＡｃの取り込
みにより測定された取り込まれたＮｅｕＡｃ。
^３％Ｒｘｎは理論的な最大値として末端Ｇａｌ含量に基づく反応の％完成を示す。
^４アンチトロンビンＩＩＩ。
^５α１アンチトリプシン。

これらの結果は、２４時間内に５０ｍＵ／ｍｇ未満のタンパク質が５０％未満のシアリ
ル化を与え、そして１０７０ｍＵ／ｍｇのタンパク質が約８５〜９０％のシアリル化を与
えるウシＳＴ６Ｇａｌを用いた実験で詳細に報告した結果とは顕著な対照をなす。Ｐａｕ
ｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９７７）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５２：２３６３−２３
７１；Ｐａｕｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９７８）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５３：５
６１７−５６２４。別の群によるラットα２，３およびα２，６シアリルトランスフェラ
ーゼの実験は、アシアロ−ＡＧＰの完全なシアリル化に、１５０〜２５０ｍＵ／ｍｇタン
パク質の酵素濃度が必要であることが明らかとなった（Ｗｅｉｎｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ
．（１９８２）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２５７：１３８４５−１３８５３）。これらの
初期の実験と一緒にすると、ＳＴ６ＧａｌＩシアリルトランスフェラーゼは、完全なシア
リル化を達成するために５０ｍＵ／ｍｇより高く、そして最高１５０ｍＵ／ｍｇが必要で
あることを示唆した。

この実施例は、ＳＴ３ＧａｌＩＩＩシアリルトランスフェラーゼを使用した組換え糖タ
ンパク質のシアリル化には予想されるよりもはるかに少ない酵素が必要であるとを示す。
１キログラムの規模の反応については、初期の実験が示した１００，０００〜１５０，０
００単位の代わりに約７，０００単位のＳＴ３ＧａｌＩＩＩシアリルトランスフェラーゼ
が必要となる。天然な供給源からのこれら酵素の精製は禁じられており、１〜２カ月の作
業の後の大規模調製についてわずか１〜１０単位の収量である。ＳＴ６ＧａｌＩおよびＳ
Ｔ３ＧａｌＩＩＩシアリルトランスフェラーゼの両方が組換えシアリルトランスフェラー
ゼとして生産され、２つの酵素で等レベルの発現が達成されると仮定すると、ＳＴ３Ｇａ
ｌＩＩＩシアリルトランスフェラーゼに対して１４〜２１倍より大きな発酵規模（または
それ以上）が、ＳＴ６ＧａｌＩシアリルトランスフェラーゼでは必要となるだろう。ＳＴ
６ＧａｌＩシアリルトランスフェラーゼについては、酵母で０．３Ｕ／リットルの発現レ
ベルが報告された（Ｂｏｒｓｉｇ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐ
ｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２１０：１４−２０）。ＳＴ３ＧａｌＩＩＩシアリルト
ランスフェラーゼの１０００Ｕ／リットルの発現レベルが、アスペルギルス ニガー（Ａ
ｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ）で達成された。現行の発現レベルで、ＳＴ６Ｇａｌ
Ｉシアリルトランスフェラーゼを使用して１ｋｇの糖タンパク質をシアリル化するために
十分な酵素を生産するためには、３００〜４５０，０００リットルの酵母の発酵が必要で
ある。対照的にアスペルギルス ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ）の１０
リットル未満の発酵が、ＳＴ３ＧａｌＩＩＩシアリルトランスフェラーゼを使用した１ｋ
ｇの糖タンパク質のシアリル化には必要となるだろう。このように大規模シアリル化反応
のためのＳＴ３ＧａｌＩＩＩシアリルトランスフェラーゼを生産するために必要とされる
発酵能力は、ＳＴ６Ｇａｌを生産するために必要とされるものより１０〜１００倍低くな
るだろう；シアリルトランスフェラーゼの生産コストは比例して減少するだろう。
３．シアリルルイスＸを作成するためのフコシル化
この実施例は、Ｎ−結合シアリルルイスＸ抗原を持つ組織組織プラスミノーゲンアクチ
ベーター（ＴＰＡ）の調製を説明する。

シアリル化。哺乳動物細胞で発現したＴＰＡは、ほとんどがシアル酸で終わるグリカン
を含むことが多いが、完全なシアリル化を確実にするために、最初にインビトロでシアリ
ル化を行うことが有利である。適当なバッファー（最も好ましくはｐＨ５．５から９の間
、例えばＴｒｉｓ緩衝化塩溶液、ｐＨ７．２）中のＴＰＡを、ＣＭＰシアル酸およびシア
リルトランスフェラーゼと、シアル酸を欠く任意のグリカンがシアリル化された種に転換
するために十分な時間、インキューベーションする。典型的な条件は１ｍｇ／ｍＬ ＴＰ
Ａ、３ｍＭ ＣＭＰシアル酸、０．０２Ｕ／ｍＬＳＴ３Ｇａｌ３、３２℃で２４時間とな
るだろう。微生物の成長は滅菌濾過または０．０２％のアジ化ナトリウムを包含するどち
らかにより止めることができる。ＴＰＡ濃度は最も好ましくは０．１ｍｇ／ｍＬからペプ
チドの溶解限界の範囲である。ＣＭＰ−ＳＡの濃度も、利用可能な部位を越えて過剰にあ
るように十分となるべきであり、そして５０μＭから５０ｍＭまでの範囲、そして２℃か
ら４０℃までの温度となるだろう。完全な反応に必要な時間は温度、受容体基質に対する
酵素の相対的量、供与体基質濃度、およびｐＨに依存するだろう。２，３結合でシアル酸
を加えることができる他のシアリルトランスフェラーゼにはＳＴ３Ｇａｌ４を含み；微生
物トランスフェラーゼも使用することができる。

フコシル化。フコシル化の典型的な条件は、１ｍｇ／ｍＬ ＴＰＡ、３ｍＭ ＧＤＰ−
フコース、０．０２Ｕ／ｍＬ ＦＴＶＩ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、３２℃で２４時間、Ｔｒ
ｉｓ緩衝化塩中となるだろう。微生物の成長は滅菌濾過または０．０２％のアジ化ナトリ
ウムを包含することにより抑えることができる。ＴＰＡ濃度は最も好ましくは０．１ｍｇ
／ｍＬからペプチドの溶解限界の範囲である。ＧＤＰ−フコースの濃度も、利用可能な部
位を越えて過剰にあるように十分となるべきであり、そして５０μＭから５０ｍＭまでの
範囲、そして２℃から４０℃までの温度となるだろう。完全な反応に必要な時間は温度、
受容体基質に対する酵素の相対的量、供与体基質濃度、およびｐＨに依存するだろう。シ
アリルルイスｘを作成することができる他のフコシルトランスフェラーゼにはＦＩＶＩＩ
、ＦＴＶ、ＦＴＩＩＩを含み；ならびに微生物トランスフェラーゼも使用することがで
きる。
４．高マンノースのトリ−マンノースコア構造への改作；ＣＨＯで生産された組織プラス
ミノーゲンアクチベーター
この実施例は、高マンノースグリカンからの戻し改作によりトリマンノースコアを持つ
組織プラスミノーゲンアクチベータの調製を説明する。

組織プラスミノーゲンアクチベータ（ＴＰＡ）は現在、チャイニーズハムスター卵巣
（ＣＨＯ）細胞で生産され、そして少量の高マンノースＮ−結合オリゴ糖を含む。マンノ
ースは種々の特異的マンノシダーゼを使用して改作される（ｔｒｉｍｍｅｄ ｄｏｗｎ）
ことができる。第１段階はＭａｎ９ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）からＭａｎ５Ｇｌｃ
ＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）を生成することである。これはマンノシダーゼＩを使用して行
うことができる。ＧｌｃＮＡｃＴ１（ＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼＩ）を使用してＧ
ｌｃＮＡｃ１Ｍａｎ５ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）を作成するか、またはマンノシダ
ーゼＩＩＩを使用してＭａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）を作成する。Ｍａｎ３Ｇ
ｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）から、ＧｌｃＮＡｃ１Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０
−１）はＧｌｃＮＡｃＴＩを使用して生成することができ、あるいはＧｌｃＮＡｃ１Ｍａ
ｎ５ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）から、ＧｌｃＮＡｃ１Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆ
ｕｃ０−１）はマンノシダーゼＩＩを使用して生成することができる。次いでＧｌｃＮＡ
ｃ１Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−１）は、ＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼＩＩ
（ＧｌｃＮＡｃＴＩＩ）を使用してＧｌｃＮＡｃ２Ｍａｎ３ＧｌｃＮＡｃ２（Ｆｕｃ０−
１）に転換される。次いで２つの末端ＧｌｃＮＡｃ残基をＧａｌＴＩを使用してガラクト
シル化し、次いでＳＡ−ＰＥＧでＳＴ３ＧａｌＩＩＩを使用してシアリル化する。

逆に、ＴＰＡは酵母または真菌系で生産することができる。同様の方法が真菌に由来す
る材料には必要である。
５．ＧｌｃＮＡｃのＥＰＯへの付加
この実施例は、ＧｌｃＮＡｃ残基のトリマンノシルコア上への付加を説明する。

ＧｌｃＮＡｃのＥＰＯへの付加。ＥＰＯはＳＦ−９昆虫細胞で発現し、そして精製した
（プロテインサイエンス（Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ）、メリデン、コネチカッ
ト州）。ＥＰＯのトリ−マンノシルグリコフォームから「トリ−マンノシルコア＋２Ｇｌ
ｃＮＡｃ」への１００％の転換（ピーク１、図９１のＰ１）は、３２℃で１００ｍＵ／ｍ
ｌのＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉおよび１００ｍＵ／ｍｌのＧｌｃＮＡｃＴ−ＩＩと２４時間、以
下の反応最終濃度でインキューベーションすることにより達成された：
１００ｍＭ ＭＥＳ ｐＨ６．５、または１００ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ７．５
５ｍＭ ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ
２０ｍＭ ＭｎＣｌ_２
１００ｍＵ／ｍｌ ＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉ
１００ｍＵ／ｍｌ ＧｌｃＮＡｃＴ−ＩＩ
１ｍｇ／ｍｌ ＥＰＯ（精製され、Ｓｆ９細胞で発現した、
プロテインサイエンスから購入）
グリコフォームの分析。このアッセイはＫ−Ｒ Ａｎｕｍｕｌａ ａｎｄ ＳＴ Ｄｈ
ｕｍｅ，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ８（１９９８）６８５−６９のわずかな変法である。
Ｎ−グリカナーゼ（ＰＮＧａｓｅ）放出Ｎ−グリカンを、アントラニル酸で還元的に標識
した。還元的にアミノ化したＮ−グリカンをＳｈｏｄｅｘ Ａｓａｈｉｐａｋ ＮＨ２Ｐ
−５０ ４Ｄアミノカラム（４．６ｍｍｘ１５０ｍｍ）に注入した。２つの溶媒を分離に
使用した：Ａ）水中、５（容量／容量）％酢酸、１％テトラヒドロフラン、および３％ト
リエチルアミン、およびＢ）アセトニトリル中、２％酢酸および１％テトラヒドロフラン
。次いでカラムを７０％Ｂで２．５分間のイソクラティック溶出、続いて９７．５分間に
わたり７０から５％Ｂに進行する直線勾配、そして最後に５％Ｂで１５分間のイソクラフ
ィック溶出により溶出した。溶出したピークは、２３０ｎｍの励起、そして４２０ｎｍの
発光波長で蛍光検出を使用して検出した。

これらの条件下で、トリマンノシルコアは２２．３分の保持時間を有し、そしてＧｎＴ
反応の生成物は２６．３分の保持時間を有する。出発原料はコアＧｌｃＮＡｃを持つ排他
的なトリマンノシルコアであった（図９１）。
６．高マンノースＮ−グリカンのハイブリッドおよび複合（ｃｏｍｐｌｅｘ）Ｎ−グリカ
ンへの改造：ウシ膵臓ＲＮａｓｅ
この実施例はハイブリッドまたは複雑なＮ−グリカンを持つウシ膵臓ＲＮａｓｅの調製
について説明する。ＲＮａｓｅの高マンノースＮ−結合グリカンを酵素的に消化し、そし
てハイブリッドＮ−結合グリカンを作成するために仕上げる（ｅｌａｂｏｒａｔｅｄ）。
さらにＲＮａｓｅの高マンノースＮ−結合グリカンを酵素的に消化して、複合Ｎ−結合グ
リカンを作成するために仕上げる。

糖ペプチド中のＮ−結合オリゴ糖の高マンノース構造は、α−マンノシダーゼおよびグ
リコシルトランスフェラーゼの組み合わせを使用してハイブリッドまたは複合形態に修飾
することができる。この例はモデル基質として単純なＮ−グリカンを使用してそのような
試みがもたらした結果をまとめる。

ウシ膵臓から精製したリボヌクレアーゼＢ（ＲＮａｓｅＢ）（シグマ）は、１２４アミ
ノ酸残基からなる糖ペプチドである。これは高マンノース構造で修飾された１つのＮ−グ
リコシル化部位を有する。その単純さおよび低分子量（１３．７ｋＤａ〜１５．５ｋＤａ
）故に、リボヌクレアーゼＢは高マンノース構造からハイブリッドまたは複合Ｎ−結合オ
リゴ糖へＮ−グリカンを改造する可能性を証明する良い候補である。ＲＮａｓｅＢのＭＡ
ＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルおよびＮ−グリカナーゼによるＲＮａｓｅＢから開裂されたオ
リゴ糖のＨＰＬＣプロフィール（図９２）は、非−修飾ペプチドの小部分以外、ペプチド
のＮ−グリコシル化部位の大部分が５〜９マンノース残基からなる高マンノースオリゴ糖
で修飾されていることを示した。

高マンノースＮ−グリカンからハイブリッドＮ−グリカンへの転換。高マンノースＮ−
グリカンは、図９３に示すようにα１，２−マンノシダーゼ、ＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉ（β−
１，２−Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ）、ＧａｌＴ−Ｉ（β１，４−
ガラクトシルトランスフェラーゼ）およびα２，３−シアリルトランスフェラーゼ／また
はα２，６−シアリルトランスフェラーゼの組み合わせを使用してハイブリッドＮ−グリ
カンに転換した。

例として、ＲＮａｓｅＢの高マンノース構造は成功裏にハイブリッド構造に転換された
。

Ｍａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒは、トリコデルマ レーゼイ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ
ｒｅｅｓｅｉ）からクローン化された単一のα１，２−マンノシダーゼにより触媒された
Ｍａｎ_５−９ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒから得た（図９４）。ＲＮａｓｅＢ（１ｇ、約６７マイ
クロモル）を３０℃で４５時間、１５ｍＵの組換えＴ．レーゼイ（ｒｅｅｓｅｉ）のα１
，２−マンノシダーゼと、１０ｍＬの総容量のＭＥＳバッファー（５０ｍＭ、ｐＨ６．５
）中でインキューベーションした。Ｍａｎ_６−９ＧｌｃＮＡｃ_２−タンパク質構造は、組
換えマンノシダーゼにより高効率でＭａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−タンパク質に成功裏に転換
された。

あるいはＭａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒは、アスペルギルス サイトイ（Ａｓｐｅｒｇｉ
ｌｌｕｓ ｓａｉｔｏｉ）から精製した単一のα１，２−マンノシダーゼにより触媒され
たＭａｎ_５−９ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒから得た（図９５）。ＲＮａｓｅＢ（４０μｇ、約２
．７ナノモル）を３７℃で４２．５時間、２５μＵの市販のＡ．サイトイ（ｓａｉｔｏｉ
）のα１，２−マンノシダーゼ（グリコまたはカルビオケム）と、２０μｌの総容量のＮ
ａＯＡｃバッファー（１００ｍＭ、ｐＨ５．０）中でインキューベーションした。Ｍａｎ
_６−９ＧｌｃＮＡｃ_２−タンパク質構造は、市販のマンノシダーゼによりＭａｎ_５Ｇｌｃ
ＮＡｃ_２−タンパク質に成功裏に転換された。しかしＧｌｃＮＡｃ−タンパク質に対応す
る新規ピークがスペクトル中に表れ、調製物中にエンドグリコシダーゼＨの混入の可能性
を示す。数種の哺乳動物アルファ−マンノシダーセがこの工程を行うために必要であった
が、真菌のα１，２−マンノシダーゼはすべてのα１，２−結合マンノース残基を除去す
るために大変効率的であった。

次いでＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉは、ＧｌｃＮＡｃ残基をＭａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒに加え
た（図９６）。ＲＮａｓｅＢ（６００μｇ、約４０ナノモル）を含むＴ．レーゼイ（ｒｅ
ｅｓｅｉ）のα１，２−マンノシダーゼ反応後の反応混合物を、非−精製組換えＧｌｃＮ
ＡｃＴ−Ｉ（３４ｍＵ）と、ＭｎＣｌ_２（２０ｍＭ）およびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ（５ｍ
Ｍ）を含有する４００μｌの総容量のＭＥＳバッファー（５０ｍＭ、ｐＨ６．５）中で、
３７℃で４２時間、インキューベーションした。ＧｌｃＮＡｃ残基は組換えＧｌｃＮＡｃ
Ｔ−ＩによりＭａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−タンパク質に定量的に加えられた。

次いでＧａｌ残基をＧａｌＴ１を使用して加えた（図９７）。ＲＮａｓｅＢ（１２０μ
ｇ、約８ナノモル）を含むＧｎＴ−Ｉ反応後の反応混合物を３７℃で２０時間、３．３ｍ
Ｕの組換えＧａｌＴ−１と、ＵＤＰ−Ｇａｌ（７．５ｍＭ）およびＭｎＣｌ_２（２０ｍＭ
）を含有する１００μｌの総容量のＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（１００ｍＭ、ｐＨ７．
３）中でインキューベーションした。Ｇａｌ残基を約９８％のＧｌｃＮＡｃ−Ｍａｎ_５Ｇ
ｌｃＮＡｃ_２−タンパク質に、組換えＧａｌＴ１により加えた。

次の工程はα２．３−シアリルトランスフェラーゼまたはα２，６−シアリルトランス
フェラーゼを使用したシアル酸の付加であった（図９８）。例としてＳＴ３ＧａｌＩＩＩ
、α２．３−シアリルトランスフェラーゼを使用した。ＲＮａｓｅＢ（１３μｇ、約０．
８７ナノモル）を含むＧａｌＴ−Ｉ反応後の反応混合物を３７℃で１６時間、８．９ｍＵ
の組換えＳＴ３ＧａｌＩＩＩと、ＣＭＰ−シアル酸（５ｍＭ）およびＭｎＣｌ_２（２０ｍ
Ｍ）を含有する２０μｌの総容量のＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（１００ｍＭ、ｐＨ７．
３）中でインキューベーションした。シアル酸残基を約９０％のＧａｌ−ＧｌｃＮＡｃ−
Ｍａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−タンパク質に、組換えＳＴ３ＧａｌＩＩＩにより供与体として
ＣＭＰ−ＳＡを使用して加えた。収量は反応条件を調整することによりさらに改善するこ
とができる。

都合がよいことに、上記の各反応後に精製または透析工程は必要ではない。より興味深
いことには、ＧａｌＴ１およびＳＴ３ＧａｌＩＩＩは１ポット反応で組み合わせることが
できる。別個の反応と比べて同様な収量が得られた。ＲＮａｓｅＢ（６０μｇ、約４ナノ
モル）を含むＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉ反応後の反応混合物を３７℃で２０時間、１．７ｍＵの
組換えＧａｌＴ１、９．８ｍＵの組換えＳＴ３ＧａｌＩＩＩと、ＵＤＰ−Ｇａｌ（７．５
ｍＭ）、ＣＭＰ−シアル酸（５ｍＭ）およびＭｎＣｌ_２（２０ｍＭ）を含有する６０μｌ
の総容量のＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（１００ｍＭ、ｐＨ７．３）中でインキューベー
ションした。

図９９に示すように、ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）は、成功裏にＲＮａｓｅＢに加えら
れた。ＲＮａｓｅＢ（６．７μｇ、約０．４５ナノモル）を含むＧａｌＴ−Ｉ反応後の反
応混合物をＨ_２Ｏに対して１時間、室温で透析し、そして３７℃で１５．５時間、５５ｍ
Ｕの組換えＳＴ３ＧａｌＩＩＩと、ＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）（０．２５ｍＭ
）およびＭｎＣｌ_２（２０ｍＭ）を含有する２０μｌの総容量のＴｒｉｓ−ＨＣｌバッフ
ァー（５０ｍＭ、ｐＨ７．３）中でインキューベーションした。ＰＥＧ−修飾シアル酸残
基はＧａｌ−ＧｌｃＮＡｃ−Ｍａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドに、組換えＳＴ３Ｇａｌ
ＩＩＩにより成功裏に加えられた。収量は反応条件を調整することによりさらに改善する
ことができる。

高マンノースＮ−グリカンの複合Ｎ−グリカンへの転換。この転換を達成するために、
ＧｌｃＮＡｃβ１，２−Ｍａｎ_３ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチド中間体を得る。図１００に示
すように、Ｍａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドからこの中間体への反応を行うために少な
くとも４つの可能な経路がある。

経路Ｉ：真菌のα１，２−マンノシダーゼにより生産されたＭａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−
ペプチドは、１つのＧｌｃＮＡｃを加えるＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼＩ（ＧｌｃＮ
ＡｃＴ−Ｉ、酵素２）の基質である。ＧｌｃＮＡｃＭａｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドの
末端α１，３−およびα１，６−結合マンノース残基を、ゴルジα−マンノシダーゼＩＩ
（ＭａｎＩＩ、酵素５）により除去する。この経路は高等な生物で行われるＮ−結合オリ
ゴ糖のプロセッシングに関する天然な経路の一部である。

経路ＩＩ：２つのマンノース残基を最初にα−マンノシダーゼ（酵素６）により除去し
、次いでＧｌｃＮＡｃをＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉ（酵素２）により加える。天然の受容体Ｍａ
ｎ_５ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒ以外では、ＧｌｃＮＡｃＴ−ＩはＭａｎ_３ＧｌｃＮＡｃ_２−Ｒも
その基質として認識し、そして１つのＧｌｃＮＡｃをマンノースコア構造に加えて、Ｇｌ
ｃＮＡｃＭａｎ_３ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドを形成する。

経路ＩＩＩ：α１，６−結合マンノースをα１，６−マンノシダーゼにより除去し、続
いてＧｌｃＮＡｃをＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉにより加え、そして末端α１，３−結合マンノー
スをα１，３−マンノシダーゼにより除去する。得られた実験データから、ＧｌｃＮＡｃ
Ｔ−ＩはこのＭａｎ_４ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドを受容体として認識し、そして１つのＧ
ｌｃＮＡｃ残基を加えてＧｌｃＮＡｃＭａｎ_４ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドを形成する。

経路ＩＶ：経路ＩＩＩと同様に、α１，３−結合マンノースをα１，３−マンノシダー
ゼにより除去し、続いてＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉ反応を行う。次いで末端α１，６−結合マン
ノースをα１，６−マンノシダーゼにより除去することができる。

ＧｌｃＮＡｃＴ−Ｉ（ＧｌｃＮＡｃβ１，２−結合をマンノースコアのα１，３−マン
ノースに加える原因である）、およびＧｌｃＮＡｃＴ−ＩＩ（第２のＧｌｃＮＡｃβ１，
２−結合をマンノースコアのα１，６−マンノースに加える原因である）の機能後、Ｇｌ
ｃＮＡｃ_２Ｍａｎ_３ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドをＧａｌＴ１およびシアリルトランスフェ
ラーゼにより処理して、２アンテナ状の複合Ｎ−グリカンを形成することができる。Ｇｌ
ｃＮＡｃＴ−ＩＶ、ＧｌｃＮＡｃＴ−Ｖおよび／またはＧｌｃＮＡｃＴ−ＶＩのような他
のＧｌｃＮＡｃトランスフェラーゼ（図１００および図１０１）も、ＧｌｃＮＡｃ_２Ｍａ
ｎ_３ＧｌｃＮＡｃ_２−ペプチドをグリコシル化することができる。ＧａｌＴ１およびシア
リルトランスフェラーゼによるさらなるグリコシル化は、多アンテナ状の複合Ｎ−グリカ
ンを形成する。酵素ＧｌｃＮＡｃＴ−ＩＩＩはバイセクティングＧｌｃＮＡｃの挿入を触
媒し、したがってＭａｎＩＩ、ＧｌｃＮＡｃＴ−ＩＩ、ＧｌｃＮＡｃＴ−ＩＶおよびＧｌ
ｃＮＡｃＴ−Ｖの作用を防止する。
７．多アンテナ状の複合グリカンを持つＥＰＯの調製
この実施例は、昆虫細胞が発現したＥＰＯからＰＥＧ化された２アンテナ状ＥＰＯ、お
よび３アンテナ状のシアリル化されたＥＰＯの調製を説明する。

バキュロウイルス／Ｓｆ９発現系（プロテイン サイエンス社、メリデン、コネチカッ
ト州）からの組換えヒトエリトロポエチン（ｒｈＥＰＯ）をグリカン分析に供し、そして
生成したグリカンは主にコアフコースを持つトリマンノシルコアであり、わずかな割合の
グリカンが１つのＧｌｃＮＡｃも有する（ＥＰＯ１）ことが示された。

ＧｎＴ−ＩおよびＧｎ−ＩＩを用いたＮ−アセチルグルコサミンの付加。２ロットのｒ
ｈＥＰＯ（１ｍｇ／ｍＬ）をＧｎＴ−ＩおよびＧｎ−ＩＩ、５ｍＭ ＵＤＰ−ｇｌｃＮＡ
ｃ、２０ｍＭ ＭｎＣｌ_２および０．０２％アジ化ナトリウムと、１００ｍＭ ＭＥＳ
ｐＨ６．５中で３２℃で２４時間インキューベーションした。ロットＡは２０ｍｇのＥＰ
Ｏおよび１００ｍＵ／ｍＬのＧｎＴ−Ｉおよび６０ｍＵ／ｍＬのＧｎＴ−ＩＩを含んだ。
ロットＢは４１ｍｇのＥＰＯおよび４１ｍＵ／ｍＬのＧｎＴ−Ｉ＋５０ｍＵ／ｍＬのＧｎ
Ｔ−ＩＩを含んだ。反応後、サンプルはゲル濾過（ＰＤ１０カラム、ファルマシアＬＫＢ
バイオテクノロジー社、ピスカタウェイ、ニュージャージー州）により脱塩した。

２−ＡＡ ＨＰＬＣプロファイリングにより分析したＥＰＯグリカン。このアッセイは
Ａｎｕｍｕｌａ ａｎｄ Ｄｈｕｍｅ，Ｇｌｙｃｏｂｉｏｌｏｇｙ８（１９９８）６８５
−６９のわずかな変法である。還元的にアミノ化したＮ−グリカンを、Ｓｈｏｄｅｘ Ａ
ｓａｈｉｐａｋ ＮＨ２Ｐ−５０ ４Ｄアミノカラム（４．６ｍｍｘ１５０ｍｍ）に注入
した。２つの溶媒を分離に使用した、Ａ）水中、５（容量／容量）％酢酸、１％テトラヒ
ドロフラン、および３％トリエチルアミン、およびＢ）アセトニトリル中、２％酢酸およ
び１％テトラヒドロフラン。次いでカラムを７０％Ｂで２．５分間のイソクラティック溶
出、続いて１００分間にわたり７０から５％Ｂに進行する直線勾配、そして最後に５％Ｂ
で２０分間のイソクラティック溶出により溶出した。溶出したピークは、２３０ｎｍの励
起、そして４２０ｎｍの発光波長で蛍光検出を使用して検出した。非−シアリル化Ｎ−結
合グリカンは、２３〜３４分のＬＣ範囲にあり、モノシアル化は３４〜４２分、ジシアリ
ル化は４２〜５２分、トリシアリル化は５５〜６５分、そしてテトラシアリル化は６８〜
７８分にある。

２ＡＡ ＨＰＬＣによるグリカンのプロファイリングは、ロットＡが９２％、２つのＧ
ｌｃＮＡｃを持つ２アンテナ状の構造（１つのＧｌｃＮＡｃを有するバランス）に転換さ
れたことが分かった。ロットＢは所望の生成物に９７％転換されたことが示された（図１
０２Ａおよび１０２Ｂ）。

ＧｎＴ−Ｖを使用した第３アンテナ枝の導入。ＧｎＴ−ＩおよびＧｎＴ−ＩＩ反応の生
成物からＥＰＯ（ロットＢの１ｍｇ／ｍＬ）を、ＰＤ−１０カラムで脱塩し、そして続い
て濃縮した後、１０ｍＵ／ｍＬのＧｎＴ−Ｖおよび５ｍＭ ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃと、５
ｍＭ ＭｎＣｌ_２および０．０２％アジ化ナトリウムを含有する１００ｍＭ ＭＥＳ ｐ
Ｈ６．５中で３２℃にて２４時間インキューベーションした。２ＡＡ ＨＰＬＣ分析では
転換が９２％の効率で起こったことが示された（図１０３）。

脱塩（ＰＤ−１０）そして濃縮後、ガラクトースをｒＧａｌＴＩを用いて加えた：ＥＰ
Ｏ（１ｍｇ／ｍＬ）を０．１Ｕ／ｍＬのＧａｌＴ１、５ｍＭ ＵＤＰ−ガラクトース、５
ｍＭ ＭｎＣｌ_２と３２℃にて２４時間インキューベーションした。

ＥＰＯから還元的にアミノ化されたＮ−グリカンのＭＡＬＤＩ分析。アントラニル酸で
還元的に標識したＥＰＯからのＰＮＧａｓｅ放出Ｎ−グリカンの小アリコートを、水上に
浮いたＭＦ−ミリポア膜フィルター（０．０２５μｍ孔、４７ｍｍ直径）で４５分間、透
析した。透析したアリコートをスピードバック（ｓｐｅｅｄｖａｃ）中で乾燥させ、少量
の水に再溶解し、そして水／アセトニトリル（５０：５０）に溶解した２，５−ジヒドロ
キシ安息香酸（１０ｇ／Ｌ）溶液と混合した。混合物を標的上で乾燥させ、そして直線／
陰−イオンモードで操作したアプライドバイオシステムズ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙ
ｓｔｅｍｓ）のＤＥ−Ｐｒｏ ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦマススペクトロメトリーを使用して分
析した。オリゴ糖を観察された質量−対−荷電比および文献の手順に基づき割り当てた。

放出されたグリカンのＭＡＬＤＩによる分析は、ガラクトースがすべての利用可能な部
位に定量的に加えられたことを示した（図１０４）。上記からのガラクトシル化ＥＰＯを
次いでＳｕｐｅｒｄｅｘ１．６／６０カラムでのゲル濾過により５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０
．１５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ６中で精製した。

シアリル化。濃縮および脱塩（ＰＤ−１０）後、１０ｍｇのガラクトシル化ＥＰＯ（１
ｍｇ／ｍＬ）をＳＴ３Ｇａｌ３（０．０５Ｕ／ｍＬ）およびＣＭＰ−ＳＡ（３ｍＭ）と、
０．０２％のアジ化ナトリウムを含む５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ｐＨ
７．２中でインキューベーションした。別個のアリコートは放射性標識ＣＭＰ−ＳＡを含
んだ。生じた取り込み標識および遊離標識は、イソクラティックなサイズ排除クロマトグ
ラフィー／ＨＰＬＣにより、０．５ｍＬ／分で４５％ＭｅＯＨ、０．１％ＴＦＡ（７．８
ｍｍｘ３０ｃｍカラム、粒子サイズ５μｍ、ＴＳＫ Ｇ２０００ＳＷ_ＸＬ、トーソーハー
ス（Ｔｏｓｏ Ｈａａｓ）、アンシステクノロジーズ（Ａｎｓｙｓ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇ
ｉｅｓ）、レイクフォレスト、カリフォルニア州）中にて分離した。この手順を使用して
、１２％のカウントが取り込まれた（３６０マイクロモル、３３マイクロモルのＥＰＯで
、すなわち約１０．９モル／モル）。理論的（３Ｎ−結合部位、３−アンテナ状）は約９
モル／モルの取り込みである。これらはこの方法の限界に相当する。ＳＴ３Ｇａｌ３の代
わりにＳＴ６Ｇａｌ１を用いた同一反応では、５．７％の放射性標識、すなわちＳＴ３Ｇ
ａｌ３に比べて約４８％がガラクトシル化ＥＰＯに取り込まれた。
Ｂ．グリコＰＥＧ化
８．ＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧの調製
この実施例はＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧの調製を説明する。

２−（ベンジルオキシカルボキサミド）−グリシルアミド−２−デオキシ−Ｄ−マンノ
ピラノースの調製。Ｎ−ベンジルオキシカルボニル−グリシル−Ｎ−ヒドロキシスクシン
イミドエステル（３．１２５ｇ、１０．２ミリモル）を、Ｄ−マンノサミン−ＨＣｌ（２
ｇ、９．３ミリモル）およびトリエチルアミン（１．４２ｍＬ、１０．２ミリモル）を含
む溶液（１０ｍＬのＭｅＯＨおよび６ｍＬのＨ_２Ｏに溶解）に加えた。反応物を室温で１
６時間撹拌し、そしてロト蒸発（ｒｏｔｏｅｖａｐｏｒａｔｉｏｎ）を使用して濃縮した
。クロマトグラフィー（シリカ、１０％ＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２）は１．７１ｇ（５０％
収率）の生成物を白色固体として得た：R_f=0.62 (シリカ；CHCl₃:MeOH:H₂O,6/4/1); ¹HNM
R(CD₃OD, 500 MHz)3.24- 3.27(m, 2H), 3.44(t, 1H), 3.55(t, 1H), 3.63-3.66 (m, 1H),
3.76-3.90 (m, 6H), 3.91 (s, 2H), 4.0 (dd, 2H), 4,28(d, 1H, J=4.4), 4.41 (d, 1H,
J=3.2), 5.03 (s, 1H), 5.10 (ｍ, 3H), 7.29-7.38 (m, 10H)。

５−（Ｎ−ベンジルオキシカルボキサミド）グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−Ｄ
−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネートの調製。２−（Ｎ−ベンジルオ
キシカルボキサミド）グリシルアミド−２−デオキシ−Ｄ−マンノピラノース（１．５９
ｇ、４．３ミリモル）を、０．１Ｍ ＨＥＰＥＳ（１２ｍＬ、ｐＨ７．５）およびピルビ
ン酸ナトリウム（４．７３ｇ、４３ミリモル）の溶液に溶解した。ノイラミン酸アルドラ
ーゼ（０．１Ｍ ＮａＣｌを含有する４５ｍＬの１０ｍＭリン酸緩衝化溶液、ｐＨ６．９
中、５４０Ｕの酵素）、および反応物混合物を３７℃で２４時間加熱した。次いで反応混
合物を遠心し、そして上清をクロマトグラフィーにかけた（Ｃ１８シリカ、Ｈ_２Ｏ（１０
０％）から３０％ ＭｅＯＨ／水への勾配）。適切な画分をプールし、濃縮し、そして残
渣をクロマトグラフィーにかけた（シリカ、１０％ＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２からＣＨ_２Ｃ
ｌ_２／ＭｅＯＨ／Ｈ_２Ｏ ６／４／１への勾配）。適切な画分を集め、濃縮し、そして残
渣を水に再懸濁した。凍結乾燥後、生成物（１．６７ｇ、８７％収率）を白色固体として
得た：R_f=0.26 (シリカ, CHCl₃/MeOH/H₂O 6/4/1); ¹HNMR (D₂O, 500MHz) 1.82 (t, 1H),
2.20 (m, 1H), 3.49 (d, 1H), 3.59 (dd, 1H), 3.67-3.86 (m, 2H), 3.87 (s, 2H), 8.89
-4.05 (m, 3H), 5.16 (s, 2H), 7.45 (m, 5H)。

５−グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロ
ピラノスロネートの調製。５−（Ｎ−ベンジルオキシカルボキサミド）グリシルアミド−
３，５−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート（１．
６６ｇ、３．６ミリモル）を、２０ｍＬの５０％水／メタノールに溶解した。フラスコを
繰り返し真空とし、そしてアルゴン下に置き、次いで１０％Ｐｄ／Ｃ（０．２２５ｇ）を
加えた。繰り返し真空にした後、次いで水素（約１気圧）をフラスコに加え、そして反応
混合物を１８時間撹拌した。反応混合物はセライト（ｃｅｌｉｔｅ）を通して濾過し、ロ
ータリーエバポレーションにより濃縮し、そして凍結乾燥させて１．２４ｇ（１００％収
率）の生成物を白色固体として得た：R_f=0.25 (シリカ, IPA/H₂O/NH₄OH 7/2/1); ¹H NMR
(D₂O, 500 MHz) 1.83 (t, 1H, J=9.9), 2.23 (dd, 1H, J=12.9, 4.69), 3.51-3.70 (m, 2
H), 3.61 (s, 2H), 3.75-3.84 (m, 2H), 3.95-4.06 (m, 3H)。

シチジン−５'−モノホスホリル−［５−（Ｎ−フルオレニルメトキシ−カルボキサミ
ド）グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−β−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌ
ロピラノスロネート］の調製。２０ｍＬのＨ_２Ｏに溶解した５−グリシルアミド−３，５
−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート（０．５５ｇ
、１．７０ミリモル）の溶液を、Ｔｒｉｓ（１．３８ｇ、１１．４ミリモル）、１Ｍ Ｍ
ｇＣｌ_２（１．１ｍＬ）およびＢＳＡ（５５ｍｇ）の溶液に加えた。溶液のｐＨを１Ｍ
ＮａＯＨ（２ｍＬ）で８．８に調整し、そしてＣＴＰ−２Ｎａ^＋（２．２３ｇ、４．２ミ
リモル）を加えた。反応混合物のｐＨは、必要に応じて１Ｍ ＮａＯＨを送るｐＨコント
ローラーで制御してｐＨ８．８を維持した。融合タンパク質（シアリルトランスフェラー
ゼ／ＣＭＰ−ノイラミン酸シンテターゼ）を溶液に加え、そして反応混合物を室温で撹拌
した。２日後、さらなる量の融合タンパク質を加え、そして反応物をさらに４０時間撹拌
した。反応混合物をＥｔＯＨ中で沈殿させ、そして沈殿物を冷ＥｔＯＨで５回洗浄して、
２．３グラムの白色固体を得た。約１．０ｇの粗生成物を１，４−ジオキサン（４ｍＬ）
、Ｈ_２Ｏ（４ｍＬ）および飽和ＮａＨＣＯ_３（３ｍＬ）に溶解し、そして２ｍｌのジオキ
サンに溶解したＦＭＯＣ−Ｃｌ（３０８ｍｇ、１．２ミリモル）の溶液を滴下した。室温
で１６時間撹拌した後、反応混合物はロータリーエバポレーションにより約６ｍＬに濃縮
し、そしてクロマトグラフィー（Ｃ１８シリカ、１００％Ｈ_２Ｏから３０％ＭｅＯＨ／Ｈ
_２Ｏへの勾配）を使用して精製した。適切な画分を合わせ、そして濃縮した。残渣を水に
溶解し、そして凍結乾燥して２５３ｍｇの白色固体を得た：R_f=0.50 (シリカ, IPA/H₂O/N
H₄OH 7/2/1); ¹H NMR (D₂O, 500 MHz) 1.64 (dt, 1H, J=12.0, 6.0), 2.50 (dd, 1H, J=1
3.2, 4.9), 3.38 (d, J=9.67, 1H), 3.60 (dd, J=11.65, 6.64, 1H), 3.79 (d, J=4.11,
1H), 3.87 (dd, J=12.24, 1.0, 1H), 3.97 (m, 2H), 4.07 (td, J=10.75, 4.84, 1H), 4.
17 (dd, J=10.68, 1.0, 1H), 4.25 (s, 2H), 4.32 (t, J=4.4, 1H), 4.37(t, J=5.8 1H),
4.6-4.7 (m,溶媒ピークにより不明瞭), 5.95 (d, J=4, 1H), 6.03 (d, J=7.4, 1H), 7.4
3-7.53 (m, 3H), 7.74 (m, 2H), 7.94 (q, J=7, 3H). MS (ES); 理論値 C₃₅H₄₂N₅O₁₈P ([
M-H]^-), 851.7; 測定値 850.0。

シチジン−５'−モノホスホリル−（５−グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−β−
Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネートの調製）。ジイソプロピルア
ミン（８３μＬ、０．５８７マイクロモル）を、水（３ｍＬ）およびメタノール（１ｍＬ
）に溶解したシチジン−５'−モノホスホリル−［５−（Ｎ−フルオレニルメトキシカル
ボキサミド）グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−β−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−
２−ノヌロピラノスロネート］（１００ｍｇ、０．１１７ミリモル）の溶液に加えた。反
応混合物を室温で１６時間撹拌し、そして反応メタノールを反応混合物からロータリーエ
バポレーションにより除去した。粗反応混合物は水を使用してＣ１８シリカゲルカラムを
通して濾過し、そして溶出液を集め、そして凍結乾燥して（８７ｍｇ、１００％）の生成
物を白色固体として得た：R_f=0.21 (シリカ，IPA/H₂O/NH₄OH 7/2/1); ¹H NMR (D₂O, 500
MHz) 1.66 (td, 1H, J=5.3), 2.50 (dd, 1H, J=13.2, 4.6), 3.43 (d, J=9.58, 1H), 3.6
3 (dd, J=11.9, 6.44, 1H), 3.88 (dd, J=11.8, 1.0, 1H), 3.95 (td, J=9.0, 2.3, 1H),
4.10 (t, J=10.42, 1H), 4.12 (td, J=10.34, 4.66, 1H), 4.18 (d, J=10.36, 1H), 4.2
4 (m, 2H), 4.31 (t, J=4.64, 1H), 4.35 (t, 1H), 6.00 (d, J=4.37, 1H), 6.13 (d, J=
7.71, 1H), 7.98 (d, J=7.64, 1H). MS (ES); 理論値 C₂₁ H₃₂ N₅O₁₁P ([M-H]^-), 629.47
; 測定値 627.9。

シチジン−５'−モノホスホリル−［５−（Ｎ−メトキシ−ポリオキシエチレン−（１
ＫＤａ）−３−オキシプロピオンアミド）−グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−β−
Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート］の調製。ベンジルトリアゾ
ール−１−イルオキシ−トリス（ジメチルアミノ）−ホスホニウム ヘキサフルオロホス
フテェート（ＢＯＰ、２１ｍｇ、４８マイクロモル）を、無水ＤＭＦ（７００μＬ）およ
びトリエチルアミン（１３μＬ、９５マイクロモル）に溶解したメトキシポリオキシエチ
レン−（１ＫＤａの平均分子量）−３−オキシプロピオン酸（４８ｍｇ、４８マイクロモ
ル）溶液に加えた。３０分後、シチジン−５'−モノホスホリル−（５−グリシルアミド
−３，５−ジデオキシ−β−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート
）（３０ｍｇ、４８マイクロモル）、水（４００μＬ）およびトリエチルアミン（１３μ
Ｌ、９５マイクロモル）を含む溶液を加えた。この溶液を２０分間、室温で撹拌し、そし
て次いでクロマトグラフィーにかけた（Ｃ１８シリカ、メタノール／水の勾配）。適切な
画分を集め、濃縮し、残渣を水に溶解し、そして凍結乾燥して白色固体として４０ｍｇ（
５０％収率）を得た：R_f=0.36 (シリカ, IPA/H₂O/NH₄OH 7/2/1); ¹H NMR (D₂O, 500MHz)
1.66 (td, 1H, J=5.3), 2.50 (dd, 1H, J=13.2, 4.6), 2.64(t, J=5.99, 3H) 3.43 (d, J
=9.58, 1H), 3.63 (m, 1H), 3.71 (s, 70H), 3.79 (m, 3.71 ピークにより不明瞭)、3.82
(t, J=6.19, 1H) 3.88 (dd, J=11.8, 1.0, 1H), 3.95 (td, J=9.0, 2.3, 1H), 3.98 (t,
J=5.06, 1H), 4.12 (td, J=10.34, 4.66, 1H), 4.18 (d, J=10.36, 1H), 4.23 (d, J=4.
85, 2H), 4.31 (t, J=4.64, 1H), 4.35 (t, 1H), 6.00 (d, J=4.55, 1H), 6.13 (d, J=7.
56, 1H), 7.98 (d, J=7.54, 1H). MS (MALDI), 観測値 [M-H]; 1594.5, 1638.5, 1682.4,
1726.4, 1770.3, 1814.4, 1858.2, 1881.5, 1903.5, 1947.3。

シチジン−５'−モノホスホリル−［５−（Ｎ−メトキシ−ポリオキシエチレン−（１
０ＫＤａ）−オキシカルボキサミド）−グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−β−Ｄ−
グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート］の調製。シチジン−５'−モノ
ホスホリル−（５−グリシルアミド−３，５−ジデオキシ−β−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラ
クト−２−ノヌロピラノスロネート）（２．５ｍｇ、４マイクロモル）および水（１８０
μＬ）を、トリエチルアミン（１．１μＬ、８マイクロモル）を含有する無水ＤＭＦ（８
００μＬ）中の（メトキシポリオキシエチレン−（１０ＫＤａ、平均分子量）−オキシカ
ルボニル−（Ｎ−オキシベンゾトリアゾール）エステル（４０ｍｇ、４マイクロモル）の
溶液に加え、そして反応混合物を室温で１時間撹拌した。反応混合物を水（８ｍＬ）で希
釈し、そして逆層フラッシュクロマトグラフィーにより精製した（Ｃ１８シリカ、メタノ
ール／水の勾配）。適切な画分を合わせ、濃縮し、残渣を水に溶解し、そして凍結乾燥し
て白色固体として２０ｍｇの生成物（４６％収率）を得た：R_f=0.35 (シリカ, IPA/H₂O/N
H₄OH 7/2/1); ¹H NMR (D₂O, 500 MHz)δ1.66(td, 1H), 2.50(dd, 1H), 2.64 (t, 3H) 3.5
5-3.7 (m, 3.71ピークのより不明瞭)、3.71(s, 488H), 3.72-4.0 (m, 3.71ピークのより
不明瞭), 4.23 (m, 3H), 4.31 (t, 1H), 4.35 (t, 1H), 6.00 (d, J=4.77, 1H), 6.12 (d
, J=7.52, 1H), 7.98 (d, J=7.89, 1H). MS (MALDI), 観測値 [MCMP+Na]; 10780。
９．ヒト下垂体由来ＦＳＨのグリコＰＥＧ化
この実施例は本発明の結合物の集成体を説明する。濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）は脱シ
アリル化し、そしてＣＭＰ−（シアル酸）−ＰＥＧを結合した。

濾胞刺激ホルモンの脱シアリル化。濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）（ヒト下垂体、カルビ
オケム、カタログ番号８６９００１）１ｍｇを、５００μＬの５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣ
ｌ、ｐＨ７．４、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２に溶解した。この溶液３７
５μＬを小さいプラスチック製の試験管に移し、そして２６３ｍＵのノイラミニダーゼＩ
Ｉ（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ）をそれに加えた。反応混合物
は１５時間、３２℃で穏やかに振盪した。反応混合物を、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、
ｐＨ７．４、１５０ｍＭ ＮａＣｌおよび０．０５％ＮａＮ_３で前平衡化したＮ−（ｐ−
アミノフェニル）オキサミン酸−アガロースゲル結合体、６００μＬに加え、そして６．
５時間、４℃で穏やかに回転した。懸濁液を２分間、１４，０００ｒｐｍで遠心し、そし
て上清を集めた。ビーズを０．５ｍＬのバッファーで５回洗浄し、そしてすべての上清を
プールした。酵素溶液を１５時間、４℃で２リットルの溶液（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣ
ｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３を含有する）を用いて透析し（７
０００ＭＷＣＯ）、そして４時間、４℃で５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１
Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３で２回、透析した。次いで溶液を２μｇ／μＬにＳｐ
ｅｅｄ Ｖａｃで濃縮し、そして−２０℃で保存した。反応サンプルをＩＥＦゲルで分析
した（ｐＨ３〜７）（インビトロゲン：Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）（図１０５）。

ヒト下垂体−由来ＳＡ−ＦＳＨおよびＰＥＧ−ＳＡ−濾胞刺激ホルモンの調製。脱シア
リル化したＦＳＨ（１００μｇ、５０μＬ）およびＣＭＰ−シアル酸またはＣＭＰ−ＳＡ
−ＰＥＧ（１ｋＤａまたは１０ｋＤａ）（０．０５マイクロモル）を、０．５ｍＬのプラ
スチック製試験管中の１３．５μＬのＨ_２Ｏ（ＮａＯＨでｐＨ８に調整）に溶解した。試
験管を簡単にボルテックス混合し、そして４０ｍＵのＳＴ３Ｇａｌ３（３６．５μＬ）を
加えた（総容量１００μＬ）。試験管を再度、ボルテックス混合し、そして２４時間、３
２℃で穏やかに振盪した。反応は−８０℃に凍結することにより止めた。１５μｇの反応
サンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥ（図１０６）、ＩＥＦゲル（図１０７）およびＭＡＬＤＩ−
ＴＯＦにより分析した。天然なＦＳＨはＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分析した（図１０８）。

反応生成物のＳＤＳ ＰＡＧＥおよびＩＥＦゲルの分析。ＳＤＳ ＰＡＧＥ分析用のノ
ベックス（Ｎｏｖｅｘ）のＴｒｉｓ−グリシン８〜１６％１ｍｍゲルをインビトロゲンか
ら購入した。７．５μＬ（１５μｇ）のＦＳＨ反応サンプルを５μＬの５０ｍＭ Ｔｒｉ
ｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ ＮａＮ_３バッファーで希
釈し、１５μＬのサンプル添加バッファーおよび１μＬの９Ｍ μ−メルカプトエタノー
ルと混合し、そして６分間、８５℃で加熱した。ゲルはインビトロゲンの指示に従い泳動
し、そしてコロイダルブルーステイン（Ｃｏｌｌｏｉｄａｌ Ｂｌｕｅ Ｓｔａｉｎ）（
インビトロゲン）で染色した。

ＦＳＨサンプル（１５μｇ）を５μＬのＴｒｉｓバッファーで希釈し、そして１５μＬ
のサンプル添加バッファーと混合した（図１０５）。次いでサンプルは等電点電気泳動ゲ
ル（ｐＨ３−７）（インビトロゲン）に乗せた（図１０８）。ゲルはインビトロゲンの指
示に従い泳動そして固定し、次いでコロイダルブルーステインにより染色した。
１０．ＣＨＯ細胞で組換え的に生産された組換えＦＳＨのグリコＰＥＧ化
この実施例は本発明の結合物の集成体を説明する。ジシアリル化ＦＳＨにＣＭＰ−（シ
アル酸）−ＰＥＧを結合した。

組換えアシアロ−濾胞刺激ホルモンの調製。ＣＨＯから生産した組換え濾胞刺激ホルモ
ン（ｒＦＳＨ）をこれらの実験に使用した。７，５００ＩＵのゴナル−Ｆ（Ｇｏｎａｌ−
Ｆ）を８ｍＬの水に溶解した。ＦＳＨ溶液を５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、
０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２中で透析し、そして５００μＬにＣｅｎｔｒ
ｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心フィルター中で濃縮した。この溶液の一部（４００μＬ）（
〜０．８ｍｇＦＳＨ）を小さいプラスチック製試験管に移し、そして２７５ｍＵのノイラ
ミニダーゼＩＩ（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ）をそれに加えた
。反応混合物は１６時間、３２℃で混合した。反応混合物を、前洗浄したＮ−（ｐ−アミ
ノフェニル）オキサミン酸−アガロース結合体（８００μＬ）に加え、そして２４時間、
４℃で穏やかに回転した。混合物を１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして上清を集めた。
ビーズを０．６ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで３回洗浄し、０．４ｍＬのＴｒｉ
ｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回、そして０．２ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１
回洗浄し、そしてすべての上清をプールした。上清は４℃で２リットルの５０ｍＭ Ｔｒ
ｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析し、そし
て５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対
してさらに２回透析した。次いで透析した溶液はＣｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心
フィルター中で４２０μＬに濃縮し、そして−２０℃で保存した。

天然な、および脱シアリル化ｒＦＳＨサンプルを、ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ（図
１０９）により分析した。ノベックスのＴｒｉｓ−グリシン８〜１６％１ｍｍゲルをイン
ビトロゲンから購入した。サンプル（７．５μ、１５μｇ）サンプルは、５μＬの５０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ ＮａＮ_３バッ
ファーで希釈し、１５μＬのサンプル添加バッファーおよび１μＬの９Ｍ β−メルカプ
トエタノールと混合し、そして６分間、８５℃で加熱した。ゲルはインビトロゲンの指示
に従い泳動し、そしてコロイダルブルーステイン（インビトロゲン）で染色した。等電点
電気泳動ゲル（ｐＨ３−７）はインビトロゲンから購入した。サンプル（７．５μＬ、１
５μｇ）を５μＬのＴｒｉｓバッファーで希釈し、そして１５μＬのサンプル添加バッフ
ァーと混合した。ゲルはインビトロゲンの指示に従い乗せ、泳動し、そして固定した。ゲ
ルをコロイダルブルーステインにより染色した。天然な、および脱シアリル化ＦＳＨは水
に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦにより分析した。

組換え濾胞刺激ホルモンのシアリル−ＰＥＧ化。脱シアリル化したＦＳＨ（１００μｇ
、５４μＬ）およびＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａまたは１０ｋＤａ）（０．０５マイ
クロモル）を、０．５ｍＬのプラスチック製試験管中の２８μＬのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、０
．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解した。試験管を簡単にボル
テックス混合し、そして２０ｍＵのＳＴ３Ｇａｌ３を加えた（総容量１００μＬ）。試験
管を再度、ボルテックス混合し、２４時間、３２℃で穏やかに混合し、そして反応は−８
０℃に凍結することにより止めた。この反応のサンプルを上記のようにＳＤＳ−ＰＡＧＥ
ゲル（図１１０）、ＩＥＦゲル（図１１１）およびＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析
した。

ＭＡＬＤＩはＰＥＧ化ｒＦＳＨについても行った。イオン化中、ＳＡ−ＰＥＧは糖タン
パク質のＮ−グリカン構造から排除される。天然なＦＳＨは１３９２８にピークを与えた
；AS-rFSH (13282); 再シアリル化 r-FSH (13332); PEG100-rFSH (13515; 14960 (1); 16
455 (2); 17796 (3); 19321 (4)); および PEG 10000 (23560 (1); 24790 (2); 45670 (3
); および 56760 (4))。
１１．グリコＰＥＧ化ＦＳＨの薬物動態学的実験
この実施例は非−ＰＥＧ化ＦＳＨと比べて、本発明の方法に従い調製したグリコＰＥＧ
化濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）の薬物動態学的特性の試験を説明する。

ＦＳＨ、ＦＳＨ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）およびＦＳＨ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ
）は、標準的条件を使用して放射性ヨウ素化し（アマーシャム バイオサイエンス、アー
リントンハイツ、イリノイ州）、そして０．１％ＢＳＡを含有するリン酸緩衝化生理食塩
水に配合した。リン酸バッファーで適切な濃度に希釈した後、各試験ＦＳＨタンパク質（
それぞれ０．４μｇ）をメスのＳｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラット（２５０〜３００ｇ
体重）に静脈内注射し、そして０〜８０時間の時点で採血した。血液サンプル中の放射活
性は、ガンマカウンターを使用して分析し、そして標準的方法を使用して薬物動態学を分
析した（図１１２）。ＦＳＨはＦＳＨ−ＰＥＧ（１ＫＤａ）よりもかなり急速に血液から
排除され、これは次いでＦＳＨ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）よりも幾分く排除された。
１２．ＦＳＨペプチドのバイオアッセイ
この実施例は培養したセルトリー（Ｓｅｒｔｏｒｉ）細胞に基づく濾胞刺激ホルモン（
ＦＳＨ）活性に関するバイオアッセイを説明する。このアッセイは複合糖質化を含むグリ
カン改造後のＦＳＨの生物活性を測定するために有用である。

このバイオアッセイは、黄体形成ホルモン（ＬＨ）ではなくＦＳＨが、非成熟老ラット
から得られた培養したセルトリー細胞に加えられた時、生産されるエストラジオールの量
との間に存在する用量−応答関係に基づく。外因性テストステロンはＦＳＨの存在下で１
７β−ヒストラジオールに転換される。

７〜１０日齢のＳｐｒａｇｕｅ Ｄａｗｌｅｙラットをセルトリー細胞を得るために使
用した。屠殺後、精巣を被膜剥離し、そして組織はコラゲナーゼ（１ｍｇ／ｍｌ）、トリ
プシン（１ｍｇ／ｍｌ）、ヒアルロニダーゼ（１ｍｇ／ｍｌ）およびＤＮａｓｅ（５μｇ
／ｍｌ）中で５〜１０分間、インキューベーションすることにより分散させた。細管フラ
グメントはフラスコの底に沈み、そしてＰＢＳで洗浄した（１ｘ）。細管フラグメントは
２０分間、同じ酵素を含有する媒質で再インキューベーションした：コラゲナーゼ（１ｍ
ｇ／ｍｌ）、トリプシン（１ｍｇ／ｍｌ）、ヒアルロニダーゼ（１ｍｇ／ｍｌ）およびＤ
Ｎａｓｅ（５μｇ／ｍｌ）。

細管フラグメントを均一化し、そして２４ウェルプレート中の無血清培地に入れた。ウ
ェルあたり５ｘ１０^５細胞を分散させた。３７℃および５％ＣＯ_２で４８時間のインキュ
ーベーション後、新しい培地を細胞に加えた。無血清培地の組成：ＤＭＥＭ（１容量）、
ハムの（Ｈａｍ'ｓ）Ｆ１０栄養混合物（１容量）、インスリン １μｇ／ｍｌ、トラン
スフェリン ５μｇ／ｍｌ、ＥＧＦ １０ｎｇ／ｍｌ、Ｔ４ ２０ｐｇ／ｍｌ、ヒドロコ
ルチゾン１０^−８Ｍ、レチン酸 １０^−６Ｍ。

刺激実験は、標準ＦＳＨまたはサンプルとの３７℃および５％ＣＯ_２での２４時間のイ
ンキューベーションからなる。変動の平均アッセイ内係数は９％であり、そして変動の平
均アッセイ間係数は１１％である。

１７Ｂ−エストラジオールＥｌｉｓａキットＤＥ２０００（Ｒ＆Ｄシステムズ（Ｓｙｓ
ｔｅｍｓ）、ミネアポリス、ミネソタ州）を使用して、ＦＳＨ、ＦＳＨ−ＳＡ−ＰＥＧ（
１ＫＤａ）およびＦＳＨ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）とのインキューベーション後のエ
ストラジオールレベルを定量した。

手順は以下の通りであった：１００μｌのエストラジオール標準（キットにより提供さ
れ、そしてキットの使用説明書により調製した）、またはサンプルを１７Ｂ−エストラジ
オールＥＬｉｓａプレート（１つまたは複数）のウェルにピペットで加えた：５０μｌの
１７Ｂ−エストラジオール結合物（キットにより提供され、そしてキットの使用説明書に
より調製した）を各ウェルに加えた；５０μｌの１７Ｂ−エストラジオール抗体溶液（キ
ットにより提供され、そしてキットの使用説明書により調製した）を各ウェルに加えた；
プレートを２時間、室温で２００ｒｐｍにてインキューベーションした；液体を各ウェル
から吸引した；ウェルを４回、洗浄溶液を使用して洗浄した；すべての液体をウェルから
除去した；２００μｌのｐＮＰＰ基質（キットにより提供され、そしてキットの使用説明
書により調製した）をすべてのウェルに加え、そして４５分間インキューベーションした
；５０μｌの停止溶液（キットにより提供され、そしてキットの使用説明書により調製し
た）を加え、そしてプレートを４０５ｎｍで読んだ（図１１３）。ＦＳＨ−ＰＥＧ（１０
ＫＤａ）は１μｇ／ｍｌでセルトリー細胞の穏やかな刺激を現したが、ＦＳＨ−ＰＥＧ（
１ＫＤａ）は非ＰＥＧ化ＦＳＨよりも最高５０％多くセルトリー細胞を刺激した。
１３．トランスフェリンのグリコＰＥＧ化
この実施例はアシアロトランスフェリンの調製およびＰＥＧ−ＣＭＰ−シアル酸でのそ
のシアリル化を説明する。

アシアロ−トランスフェリンの調製。ヒト−由来ホロ−トランスフェリン（１０ｍｇ）
を５００μＬの５０ｍＭ ＮａＯＡｃ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２、ｐＨ５．５に溶解した。こ
の溶液に、５００ｍＵのノイラミニダーゼＩＩ（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈ
ｏｌｅｒａｅ）を加え、そして反応混合物を２０．５時間、３７℃で穏やかに振盪した。
反応混合物を、前洗浄したＮ−（ｐ−アミノフェニル）オキサミン酸−アガロース結合体
（６００μＬ）に加え、そして２４時間、４℃で穏やかに回転させてビーズを洗浄した。
混合物を１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして上清を集めた。反応混合物は１００μＬの
３０ｍＭ ＥＤＴＡを、２０時間、４℃で穏やかに回転させた洗浄ビーズに加えることに
より５ｍＭ ＥＤＴＡに合わせた。上清を２分間、１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして
上清を集めた。ビーズを０．３５ｍＬの５０ｍＭ ＮａＯＡｃ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２、５
ｍＭ ＥＤＴＡ、ｐＨ５．５で５回洗浄し、そしてすべての上清をプールした。酵素溶液
は４℃で２回、１５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ７．４中で透析した
。０．３ｍＬのトランスフェリン溶液（全部で３．３ｍＬ）を除去し、そして水に対して
２回、透析した。残りは４℃でさらに２回、リン酸緩衝化生理食塩水に透析した。透析し
た溶液は−２０℃で保存した。タンパク質サンプルはＩＥＦ電気泳動により分析した。サ
ンプル（９μＬ、２５μｇ）を１６μＬのＴｒｉｓバッファーで希釈し、そして２５μＬ
のサンプル添加バッファーと混合し、そして等電点電気泳動ゲル（ｐＨ３−７）に乗せた
。ゲルは標準的な手順を使用して泳動し、そして固定した。ゲルをコロイダルブルーステ
インにより染色した。

アシアロ−トランスフェリンのシアリル−ＰＥＧ化。脱シアリル化トランスフェリン（
２５０μｇ）およびＣＭＰ−シアル酸またはＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａまたは１０
ｋＤａ）（０．０５マイクロモル）を、１．５ｍＬのプラスチック製試験管中の６９μＬ
の５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．
２に溶解した。試験管を簡単にボルテックス混合し、そして１００ｍＵのＳＴ３Ｇａｌ３
を（９０μＬ）加えた（総容量２５０μＬ）。試験管を再度、ボルテックス混合し、そし
て２４時間、３２℃で穏やかに混合した。反応は−８０℃に凍結することにより止めた。
ノベックスのＴｒｉｓ−グリシン８〜１６％１ｍｍゲルをＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析に使用し
た（図１１４）。サンプル（２５μＬ、２５μｇ）は、２５μＬのサンプル添加バッファ
ーおよび０．４μＬのβ−メルカプトエタノールと混合し、そして６分間、８５℃で加熱
した。ゲルは標準条件を使用して泳動し、そしてコロイダルブルーステインで染色した。
ＩＥＦゲルも上記のように行った図１１５）。サンプルを水に対して透析し、ＭＡＬＤＩ
−ＴＯＦにより分析した。

結果。ＭＡＬＤＩも行った。天然なトランスフェリン（７８７２９）；アシアロトラン
スフェリン（７８１９７）；再シアリル化トランスフェリン（７９６２６／８０７０３）
；ＳＡ−ＰＥＧ １ｋを含む（７９０３７（１）；８０９６１（２）；８２５３５（３）
；８４７７８（４））；ＳＡ−ＰＥＧ ５ｋを含む（９０００３（２）；９６１１７（３
）；９６１１７（４））；ＳＡ−ＰＥＧ １０ｋを含む（１００３３６（２）；１１１４
２１（３）；１２２５１０（４））。
１４．ＢＨＫ細胞で生産された組換え第ＶＩＩａ因子のグリコＰＥＧ化
この実施例はＣＨＯ細胞で作られた組換え第ＶＩＩａ因子のＰＥＧ化を説明する。

アシアロ−第ＶＩＩａ因子の調製。組換え第ＶＩＩａ因子はＢＨＫ細胞（乳児ハムスタ
ーの腎臓細胞）で生産された。第ＶＩＩａ因子（１４．２ｍｇ）を１ｍｇ／ｍｌでバッフ
ァー溶液（ｐＨ７．４、０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．００１Ｍ
ＣａＣｌ_２、０．０５％ ＮａＮ_３）に溶解し、そして３００ｍＵ／ｍＬのシアリダーゼ
（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ）−アガロース結合体と３日間、
３２℃でインキューベーションした。反応を監視するために、反応の少量のアリコートを
適当なバッファーで希釈し、そしてインビトロゲンの手順に従いＩＥＦゲルを行った（図
１１６）。混合物を３，５００ｒｐｍで遠心し、そして上清を集めた。樹脂を３回（３×
２ｍＬ）、上記バッファー溶液（ｐＨ７．４、０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ、０．１５Ｍ Ｎａ
Ｃｌ、０．０５％ ＮａＮ_３）で洗浄し、そして合わせた洗浄液をＣｅｎｔｒｉｃｏｎ−
Ｐｌｕｓ−２０で濃縮した。残る溶液は０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．４）、０．１５
Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ ＮａＮ_３とバッファー交換して１４．４ｍＬの最終容量とし
た。

第ＶＩＩａ因子−ＳＡ−ＰＥＧ（１ＫＤａおよび１０ＫＤａ）の調製。脱シアリル化し
たｒ第ＶＩＩａ因子溶液を２つの７．２ｍｌの等量サンプルに分けた。各サンプルに、Ｃ
ＭＰ−ＳＡ−５−ＰＥＧ（１ＫＤａ）（７．４ｍｇ）またはＣＭＰ−ＳＡ−５−ＰＥＧ（
１０ｋＤａ）（７．４ｍｇ）のいずかれを加えた。ＳＴ３Ｇａｌ３（１．５８Ｕ）を両方
の試験管に加え、そして反応混合物を３２℃で９６時間インキューベーションした。反応
はインビトロゲンにより記載された試薬および条件を使用して、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルに
より監視した。反応が完了した時、反応混合物をトーソー ハースＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０
００調製用カラムを使用して、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用して精製し、そし
てＵＶ吸収に基づき画分を集めた。生成物を含む合わせた画分を４℃でＣｅｎｔｒｉｃｏ
ｎ−Ｐｌｕｓ−２０遠心フィルター（ミリポア、ベットフォード、マサチューセッツ州）
中で濃縮し、そして濃縮した溶液を再配合して１．９７ｍｇの第ＶＩＩａ因子−ＰＥＧを
得た（ビシンクロニン酸タンパク質アッセイ、ＢＣＡアッセイ、シグマ−アルドリッチ、
セントルイス、ミズーリ州）。反応生成物は、インビトロゲンにより供給された手順およ
び試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析した。サンプルを水に対
して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦにより分析した。図１１７は天然な第ＶＩＩａ因
子に関するＭＡＬＤＩの結果を示す。図１１８は、１ＫＤａＰＥＧでＰＥＧ化された第Ｖ
ＩＩａ因子に関するＭＡＬＤＩの結果を含み、ここで１ＫＤａＰＥＧでＰＥＧ化された第
ＶＩＩａ因子のピークが明らかである。図１１９は、１０ＫＤａＰＥＧでＰＥＧ化された
第ＶＩＩａ因子に関するＭＡＬＤＩの結果を含み、ここで１０ＫＤａＰＥＧでＰＥＧ化さ
れた第ＶＩＩａ因子のピークが明らかである。図１２０はすべての反応生成物のＳＤＳ−
ＰＡＧＥ分析を表し、ここで第ＶＩＩ因子−ＳＡ−ＰＥＧ（１０−ＫＤａ）のバンドが明
らかである。
１５．ＣＨＯ細胞で生産された第ＩＸ因子のグリコＰＥＧ化
この実施例はアシアロ第ＩＸ因子の調製およびＰＥＧ−ＣＭＰ−シアル酸を用いたその
シアリル化を説明する。

ｒ第ＩＸ因子の脱シアリル化。凝固第ＩＸ因子（ｒ第ＩＸ因子）の組換え形は、ＣＨＯ
細胞で作成した。６０００ＩＵのｒ第ＩＸ因子を全部で１２ｍｌのＵＳＰ Ｈ_２Ｏに溶解
した。この溶液をＣｅｎｔｒｉｃｏｎ−Ｐｌｕｓ−２０、さらに６ｍＬのＵＳＰ Ｈ_２Ｏ
を含むＰＬ−１０遠心フィルターに移した。溶液を２ｍＬに濃縮し、そして１５ｍＬの５
０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２、
０．０５％ＮａＮ_３で希釈し、そして再濃縮した。希釈／濃縮を４回繰り返してバッファ
ー交換を効率的に行って３．０ｍＬの最終容量とした。この容液から２．９ｍＬ（約２９
ｍｇのｒ第ＩＸ因子）を小さいプラスチック製試験管に移し、そしてこれに５３０ｍＵの
α２−３，６，８−ノイラミニダーゼ−アガロース結合体（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒ
ｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ、カルビオケム、４５０μＬ）を加えた。反応混合物を２６．５
時間、３２℃で穏やかに回転させた。混合物を２分間、１０，０００ｒｐｍで遠心し、そ
して上清を集めた。アガロースビーズ（ノイラミニダーゼを含む）を６回、０．５ｍＬの
５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．１２、１Ｍ ＮａＣｌ、０，０５％ ＮａＮ_３で
洗浄した。プールした洗浄液および上清を２分間、１０，０００ｒｐｍで再遠心して残存
するアガロース樹脂を除去した。プールした脱シアリル化タンパク質溶液を同バッファー
で１９ｍＬに希釈し、そしてＣｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０ ＰＬ−１０遠心フィル
ター中で〜２ｍＬに濃縮した。溶液を２回、１５ｍＬの５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐ
Ｈ７．４、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３で希釈し、そして２ｍＬに再濃縮
した。最後に脱シアリル化されたｒ第ＩＸ因子溶液は３ｍＬの最終容量（〜１０ｍｇ／ｍ
Ｌ）にＴｒｉｓバッファーで希釈した。天然な、および脱シアリル化ｒ第ＩＸ因子のサン
プルは、ＩＥＦ電気泳動により分析した。等電点電気泳動ゲル（ｐＨ３−７）は、最初に
１０μＬのＴｒｉｓバッファーで希釈し、そして１２μＬのサンプル添加バッファーと混
合した１．５μＬ（１５μｇ）のサンプルを使用して泳動した。標準的手順を使用してゲ
ルを乗せ、泳動し、そして固定した。ゲルはコロイダルブルーステインにより染色し（図
１２１）、脱シアリル化第ＩＸ因子に関するバンドを示した。

ＰＥＧ（１ＫＤａおよび１０ＫＤａ）−ＳＡ−第ＩＸ因子の調製。脱シアリル化したｒ
第ＩＸ因子（２９ｍｇ、３ｍＬ）を、２つの１５ｍＬの遠心管中の２つの１．５ｍＬ（１
４．５ｍｇ）サンプルに分けた。各溶液を１２．６７ｍＬの５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ
、ｐＨ７．４、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３で希釈し、そしてＣＭＰ−Ｓ
Ａ−ＰＥＧ−１ｋまたは１０ｋ（７．２５マイクロモル）のどちらかを加えた。試験管を
穏やかに上下して混合し、そして２．９ＵのＳＴ３Ｇａｌ３（３２６μＬ）を加えた（１
４．５ｍＬの総容量）。試験管を再度、上下し、そして６５時間、３２℃で穏やかに回転
した。反応は−２０℃で凍結することにより止めた。反応の１０μｇのサンプルをＳＤＳ
−ＰＡＧＥにより分析した。ＰＥＧ化タンパク質はトーソー ハース Ｂｉｏｓｅｐ Ｇ
３０００ＳＷ（２１．５×３０ｃｍ、１３μｍ）ＨＰＬＣカラムで、ダルベッコのリン酸
緩衝化生理食塩水、ｐＨ７．１（ギブコ）、６ｍＬ／分を使用して精製した。反応および
精製は、ＳＤＳＰａｇｅおよびＩＥＦゲルを使用して監視した。ノベックスのＴｒｉｓ−
グリシン４−２０％１ｍｍゲルに、２μＬの５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、
１５０ｍＭ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３バッファーで希釈し、そして１２μＬのサン
プル添加バッファーおよび１μＬの０．５ＭＤＴＴと混合し、そして８５℃で６分間加熱
した後の１０μＬ（１０μｇ）のサンプルを乗せた。ゲルはコロイダルブルーステインに
より染色し（図１２２）、ＰＥＧ（１ＫＤａおよび１０ｋＤａ）−ＳＡ−第ＩＸ因子に関
するバンドを示した。
１６．第ＩＸ因子の直接シアリル−グリコＰＥＧ化
この実施例は、事前のシアリダーゼ処理無しのペプチドのシアリル−グリコＰＥＧ化の
調製を説明する。ここで第ＩＸ因子は例示ペプチドである。

第ＩＸ因子の直接シアリル−ＰＥＧ化（１０ＫＤａ）。第ＩＸ因子（１１００ＩＵ）を
５ｍＬの２０ｍＭ ヒスチジン、２％シュクロースを含む５２０ｍＭ グリシンバッファ
ー、０．０５％ＮａＮ_３および０．０１％ポリソルベート８０、ｐＨ５．０に溶解した。
次いでＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）（２７．８ｍｇ、３．５マイクロモル）をこ
の溶液に加え、反応混合物を上下して穏やかに混合し、そして１．４ＵのＳＴ３Ｇａｌ３
を加えた。反応混合物を１９時間、３２℃で穏やかに回転し、そして反応を凍結により止
めた。反応混合物は、インビトロゲンにより記載された展開および染色（コロイダルブル
ー）条件を使用してＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルにより分析した。簡単に説明すると、サンプル
（１０μＬ）を１２μＬのサンプル添加バッファーおよび２μＬの０．５Ｍ ＤＴＴと混
合し、そして６分間、８５℃で加熱した（図１２３、レーン８、９および１０）。生成物
はＳｕｐｅｒｄｅｘ２００ １０／２０カラム（アマーシャム、ウプサラ、スウェーデン
）カラムで、ダルベッコのリン酸緩衝化生理食塩水、ｐＨ７．１（ギブコ）、６ｍＬ／分
で精製した。図（図１２３はＨＰＬＣで精製したＰＥＧ化第ＩＸ因子のバンド（レーン５
）を含む。
１７．グリコＰＥＧ化第ＩＸ因子のシアル酸キャッピング
この実施例は、シアリル−グリコＰＥＧ化ペプチドのシアル酸キャッピングの手順を説
明する。ここで第ＩＸ因子は例示ペプチドである。

第ＩＸ−ＳＡ−ＰＥＧのＮ−結合およびＯ−結合グリカンのシアル酸キャッピング（１
０ＫＤａ）。精製したｒ第ＩＸ因子−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）（２．４ｍｇ）を、Ｃｅｎｔ
ｒｉｃｏｎ（商標）Ｐｌｕｓ２０ＰＬ−１０（ミリポア社、ベッドフォード、マサチュー
セッツ州）遠心フィルター中で濃縮し、そしてバッファーを５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ
、ｐＨ７．２、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に交換して１．８５ｍＬの最
終容量とした。タンパク質溶液を３７２μＬの同Ｔｒｉｓバッファーで希釈し、そして７
．４ｍｇのＣＭＰ−ＳＡ（１２マイクロモル）を固体で加えた。溶液は上下することによ
り穏やかに混合し、そして０．１ＵのＳＴ３Ｇａｌ１および０．１ＵＳＴ３Ｇａｌ３を加
えた。反応混合物を４２時間、３２℃で穏やかに回転した。

反応の１０μｇのサンプルをＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分析した。ノベックスのＴｒｉｓ
−グリシン４−１２％１ｍｍゲルをインビトロゲンにより記載されているように行い、そ
してコロイダルブルーを使用して染色した。簡単に説明すると、サンプル、１０μＬ（１
０μｇ）を１２μＬのサンプル添加バッファーおよび１μＬの０．５Ｍ ＤＴＴと混合し
、そして６分間、８５℃で加熱した（図１２３、レーン４）。
１８．哺乳動物または昆虫系で発現したタンパク質のグリコＰＥＧ化：ＥＰＯ、インター
フェロンαおよびインターフェロンβ
この実施例は哺乳動物または昆虫系で発現したＰＥＧ化ペプチドの調製を説明する。

哺乳動物発現系から受容体の調製。ＣＭＰ−シアル酸ＰＥＧを使用してグリコＰＥＧ化
されるペプチドは、ガラクトースで終結するグリカンを持つ必要がある。哺乳動物発現系
からのほとんどのペプチドは、最初に除去される必要がある末端シアル酸を有する。

シアリダーゼ消化。ペプチドはシアリダーゼを使用して脱シアリル化する。典型的な手
順には、１ｍｇ／ｍＬ溶液のペプチド（Ｔｒｉｓ−緩衝化塩溶液中、ｐＨ７．２、５ｍＭ
ＣａＣｌ_２を加えて含む）を、０．２Ｕ／ｍＬの固定化シアリダーゼ（ビブリオ コレ
ラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ由来、カルビオケム）と３２℃で２４時間インキュ
ーベーションすることを含む。微生物の成長は、滅菌濾過または０．０２％のアジ化ナト
リウムを包含することにより止めることができる。次いで樹脂を遠心または濾過により取
り出し、次いで洗浄してトラップされたペプチドを回収する。この時点で、ＥＤＴＡを溶
液に加えて樹脂から浸出したシアリダーゼは阻害することができる。

昆虫発現系の調製。ＥＰＯ、インターフェロン−アルファおよびインターフェロン−ベ
ータは、酵母、植物または昆虫細胞のような非哺乳動物系でも発現させることができる。
ＣＭＰ−シアル酸ＰＥＧを使用してグリコＰＥＧ化されるペプチドは、ガラクトースで終
結するグリカンを持つ必要がある。例えば昆虫細胞で発現されるペプチド上のＮ−グリカ
ンのほとんどは、トリマンノシルコアである。これらのグリカンはそれらがシアリルトラ
ンスフェラーゼの受容体である前に、最初にガラクトースで終結するグリカンに改築され
る。

トリマンノシルコアから受容体グリカンの構築。５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、５ｍＭ ＵＤＰ
−ｇｌｃＮＡｃ、０．０５Ｕ／ｍＬ ＧＬＣＮＡＣＴ Ｉ、０．０５Ｕ／ｍＬ ＧＬＣＮ
ＡＣＴ ＩＩを含むＴｒｉｓ−緩衝化塩溶液、ｐＨ７．２中のペプチド（１ｍｇ／ｍＬ）
を３２℃で２４時間、または反応が実質的に完了するまでインキューベーションする。微
生物の成長は、滅菌濾過または０．０２％のアジ化ナトリウムを包含することにより止め
ることができる。バッファー交換をしてＵＤＰおよび他の低分子を除去した後、ＵＤＰ−
ガラクトースおよびＭｎＣｌ_２をそれぞれ５ｍＭまで加え、ガラクトシルトランスフェラ
ーゼを０．０５Ｕ／ｍＬまで加え、そして３２℃で２４時間、または反応が実質的に完了
するまでインキューベーションする。微生物の成長は、滅菌濾過または０．０２％のアジ
化ナトリウムを包含することにより止めることができる。このペプチドはこれでグリコＰ
ＥＧ化の準備ができている。

Ｏ−結合グリカンの構築。同様の方法をインターフェロン アルファについて使用して
、酵素的に所望するＯ−グリカンＧａｌ−ＧａｌＮＡｃを生成することができる。必要な
らば、セリンまたはトレオニンに連結したＧａｌＮＡｃを、適当なペプチドＧａｌＮＡｃ
トランスフェラーゼ（例えばＧａｌＮＡｃ Ｔ１、ＧａｌＮＡｃ Ｔ２、Ｔ３、Ｔ４等）
およびＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃを使用して加えることができる。また必要ならば、ガラクト
ースをガラクトシルトランスフェラーゼおよびＵＤＰ−ガラクトースを使用して加えるこ
とができる。

シアリルトランスフェラーゼを使用したグリコＰＥＧ化。Ｔｒｉｓ緩衝化塩溶液＋０．
０２％アジ化ナトリウム中の末端ガラクトースを持つ糖ペプチド（１ｍｇ／ｍＬ）を、Ｃ
ＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（０．７５ｍＭ）および０．４Ｕ／ｍＬシアリルトランスフェラーゼ
（ＥＰＯおよびインターフェロンベータ上のＮ−グリカンにはＳＴ３Ｇａｌ３またはＳＴ
３Ｇａｌ４；インターフェロンアルファ上のＯ−グリカンについてはＳＴ３Ｇａｌ４また
はＳＴ３Ｇａｌ１）と、３２℃で２４時間インキューベーションする。使用できる他のト
ランスフェラーゼには、フォトバクテリウム ダムセーラ（Ｐｈｏｔｏｂａｃｔｅｒｉｕ
ｍ ｄａｍｓｅｌｌａ）に由来する２，６−シアリルトランスフェラーゼを含む。受容体
ペプチド濃度は、最も好ましくは０．１ｍｇ／ｍＬからペプチドの溶解度の限界までの範
囲である。ＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧの濃度は利用可能な部位を越えて過剰にあるように十分
であるべきであるが、ＰＥＧによるペプチドの溶解度の問題を引き起こすほど高いべきで
はなく、そして５０μＭから５ｍＭまでの範囲でよく、そして温度は２℃から４０℃の範
囲でよい。反応が完了するために必要な時間は、温度、受容体基質に対する酵素の相対的
量、供与体基質濃度およびｐＨに依存するだろう。
１９．昆虫細胞で生産されたＥＰＯのグリコＰＥＧ化
この実施例は昆虫細胞が発現したＥＰＯからＰＥＧ化２アンテナ状ＥＰＯの調製法を説
明する。

バキュロウイルス／Ｓｆ９発現系（プロテインサイエンス社、メリデン、コネチカット
州）に由来する組換えヒトエリトロポエチン（ｒｈＥＰＯ）をグリカン分析に供し、そし
て得られたグリカンは、コアフコースを含む主にトリマンノシルコアであり、少ない割合
で単一ＧｌｃＮＡｃを有するグリカンも存在することが示された（図１２４）。

ＧｎＴ−ＩおよびＧｎＴ−ＩＩを用いたＮ−アセチルグルコサミンの付加。２ロットの
ｒｈＥＰＯ（１ｍｇ／ｍＬ）をＧｎＴ−ＩおよびＧｎＴ−ＩＩ、５ｍＭ ＵＤＰ−ｇｌｃ
ＮＡｃ、２０ｍＭ ＭｎＣｌ_２および０．０２％アジ化ナトリウムと、１００ｍＭ ＭＥ
Ｓ ｐＨ６．５中で３２℃にて２４時間インキューベーションした。ロットＡは２０ｍｇ
のＥＰＯおよび１００ｍＵ／ｍＬのＧｎＴ−Ｉおよび６０ｍＵ／ｍＬのＧｎＴ−ＩＩを含
んだ。ロットＢは４１ｍｇのＥＰＯおよび４１ｍＵ／ｍＬのＧｎＴＩ＋５０ｍＵ／ｍＬの
ＧｎＴ−ＩＩを含んだ。反応後、サンプルはゲル濾過（ＰＤ１０カラム、ファルマシアＬ
ＫＢバイオテクノロジー社、ピスカタウェイ、ニュージャージー州）により脱塩した。

２ＡＡ ＨＰＬＣによるグリカンのプロファイリングは、ロットＡが９２％、２つのＧ
ｌｃＮＡｃを持つ２アンテナ状構造（１つのＧｌｃＮＡｃを有するバランス）に転換され
たことを明らかにした。ロットＢは所望の生成物に９７％転換されたことが示された（図
１０２Ａおよび１０２Ｂ）。

ＥＰＯロットＡのガラクトシル化。ＥＰＯ（ロットＡの〜１６ｍｇ）を、ＧｎＴＩＩで
処理してＧｌｃＮＡｃの付加を完成した。反応は１５０ｍＭ ＮａＣｌ、ＥＰＯｍｇ／ｍ
ｌ、１ｍＭ ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０２％アジ化ナトリウム
および０．０２Ｕ／ｍｌＧｎＴＩＩを含む５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ７．２中で、３２Ｃ
にて４時間行った。ＥＰＯのガラクトシル化は３ｍＭまでのＵＤＰ−ガラクトースおよび
０．５Ｕ／ｍｌまでのＧａｌＴを添加して行い、そしてインキューベーションを３２Ｃに
て４８時間続行した。

次いでガラクトシル化ＥＰＯは、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ６
中、Ｓｕｐｅｒｄｅｘ１．６／６０カラムでのゲル濾過により精製した。次いでＥＰＯを
含むピークを２ＡＡ ＨＰＬＣにより分析した。ＨＰＬＣデータに基づき、グリカンの〜
８５％が２個のガラクトースを含み、そしてグリカンの〜１５％がガラクトシル化反応後
にガラクトースを持たなかった。

ガラクトシル化ＥＰＯのシアリル化。ガラクトシル化ＥＰＯのシアリル化は、１５０ｍ
Ｍ ＮａＣｌ、０．５ｍｇ／ｍｌ ＥＰＯ、２００ｍＵ／ｍｌ ＳＴ３Ｇａｌ３および０
．５ｍＭ ＣＭＰ−ＮＡＮまたはＣＭＰ−ＮＡＮ−ＰＥＧ（１ＫＤａ）またはＣＭＰ−Ｎ
ＡＮ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）のいずれかを含む１００ｍＭ Ｔｒｉｓ、ｐＨで、４８時間
、３２Ｃで行った。２個のガラクトース残基を有するほとんどすべてのグリカンが、ＣＭ
Ｐ−ＮＡＮとの反応後に完全にシアリル化された（２個のシアル酸／グリカン）。ＭＡＬ
ＤＩ−ＴＯＦ分析はＨＰＬＣデータを確認した。

ガラクトシル化ＥＰＯのＰＥＧ化。ＣＭＰ−ＮＡＮ−ＰＥＧ（１ＫＤａ）およびＣＭＰ
−ＮＡＮ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）を使用したＰＥＧ化反応については、反応混合物のアリ
ートをＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分析した（図１２５）。ＥＰＯペプチドの分子量は各糖の
付加で増加し、そしてＰＥＧ化反応後には分子量がさらに劇的に増加した。

ＥＰＯのインビトロバイオアッセイ。インビトロのＥＰＯバイオアッセイ（Ｈａｍｍｅ
ｒｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ，１９９６，Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ａｎａｌ．１４：
１４５５−１４６９から調整）は、多レベルのＥＰＯに対するＴＦ−１細胞系の反応性に
基づく。ＴＦ−１細胞は骨髄腫前駆体細胞の増殖および分化を調査するために良い系を提
供する。この細胞系はＴ．Ｋｉｔａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．により１９８７年１０月に重
篤な再生不良性貧血の３５歳の日本人男性に由来するヘパリン処理した骨髄吸引サンプル
で樹立された。これらの細胞はインターロイキン３または顆粒球−マクロファージコロニ
ー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）に完全に依存している。

ＴＦ−１細胞系（ＡＴＣＣ、カタログ番号ＣＲＬ−２００３）をＰＲＭＩ＋ＦＢＳ１０
％＋ＧＭ−ＣＳＦ（１２ｎｇ／ｍｌ）中で成長させ、そして３７Ｃ５％ＣＯ_２でインキュ
ーベーションした。細胞を５０００細胞／ｍｌ（培地）の濃度に懸濁し、そして２００μ
ｌを９６ウェルプレートに分配した。細胞を種々の濃度のＥＰＯ（０．１μｇ／ｍｌ〜１
０μｇ／ｍｌ）と４８時間インキューベーションした。次に２５μｌのＭＴＴ（シグマＭ
５６５５）を５ｍｇ／ｍｌで加え、プレートを３７℃で２０分〜４時間インキューベーシ
ョンし、１００μｌのイソプロパノール／ＨＣｌ溶液（１００ｍｌのイソプロパノール＋
３３３μｌのＨＣｌ ６Ｎ）を加え、５７０ｎｍ、および６３０ｎｍまたは６９０ｎｍの
ＯＤを読み、そして５７０ｎｍの読み取りから６３０ｎｍまたは６９０ｎｍの読み取りを
引くことによりＭＴＴ生存能アッセイを行った。

図１２６は、シアリル化ＥＰＯおよび１ＫＤａまたは１０ＫＤａのＰＥＧでグリコＰＥ
Ｇ化されたＥＰＯをインビトロのＥＰＯ生物活性試験に供した時の結果を含む。１ＫＤａ
のＰＥＧでグリコＰＥＧ化されたＥＰＯは、両方とも約５μｇ／ｍｌの濃度である時に非
グリコＰＥＧ化ＥＰＯとほとんど同じ活性を有した。１０ＫＤａのＰＥＧでグリコＰＥＧ
化されたＥＰＯは、両方とも約５μｇ／ｍｌの濃度である時に非グリコＰＥＧ化ＥＰＯの
約半分の活性を有した。
２０．ＣＨＯ細胞で生産されたインターフェロンαのグリコＰＥＧ化
アシアロ−インターフェロンαの調製。ＣＨＯ細胞から生産されたインターフェロンα
を２．５ｍｇ／ｍＬで５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．４、
０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２に溶解し、そして５００μＬにＣｅｎｔｒｉ
ｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心フィルター中で濃縮する。この溶液を３００ｍＵ／ｍＬのノイ
ラミニダーゼＩＩ（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ）と１６時間、
３２℃インキューベーションする。反応を監視するために、反応の小アリコートを適当な
バッファーで希釈し、そしてＩＥＦゲルを行う。次いで反応混合物を、前洗浄したＮ−（
ｐ−アミノフェニル）オキサミン酸−アガロース結合体（８００μＬ／ｍＬ反応容量）に
加え、そして洗浄したビーズを２４時間、４℃で穏やかに回転する。混合物を１０，００
０ｒｐｍで遠心し、そして上清を集める。ビーズをＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで３回
洗浄し、０．４ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回、そして０．２ｍＬのＴｒｉ
ｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回洗浄し、すべての上清をプールする。上清は４℃で５０ｍ
Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析
し、そして５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％Ｎａ
Ｎ_３に対してさらに２回透析する。次いで透析した溶液はＣｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ
２０遠心フィルターを使用して濃縮し、そして−２０℃で保存する。ＩＥＦゲルに関する
条件は、インビトロゲンにより提供される手順および試薬に従い泳動する。天然な、およ
び脱シアリル化Ｇ−ＣＳＦのサンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ
ＭＳにより分析する。

インターフェロン−アルファ−（アルファ２，３）−シアリル−ＰＥＧの調製。脱シア
リル化インターフェロンアルファを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、
０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍＭ
ＣＭＰ−シアル酸−ＰＥＧおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ１と３２℃で２日間イ
ンキューベーションする。シアル酸−ＰＥＧの取り込みを監視するために、反応の小アリ
コートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−蛍光リガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識は、
ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラム
でのゲル濾過により遊離標識から分離する。ペプチドへの蛍光標識の取り込みは、イン−
ラインの蛍光検出器を使用して定量する。２日後、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ
７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そし
てＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手
順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。天然な、お
よび脱シアリル化インターフェロン−アルファのサンプルを水に対して透析し、そしてＭ
ＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

インターフェロン−アルファ−（アルファ２，８）−シアリル−ＰＥＧの調製。アルフ
ァ２，３−シアリル化Ｏ−結合グリカンを含むＣＨＯで生産されたインターフェロン−ア
ルファを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０
．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍＭ ＣＭＰ−シアル酸−ＰＥ
Ｇおよび０．１Ｕ／ｍＬのＣＳＴ−ＩＩと３２℃で２日間インキューベーションする。シ
アル酸−ＰＥＧの取り込みを監視するために、反応の小アリコートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥ
Ｇ−蛍光リガンドを加え；ペプチドへの取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７
．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により遊離標
識から分離する。ペプチドへの蛍光標識の取り込みは、イン−ラインの蛍光検出器を使用
して定量する。２日後、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソ
ー ハースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を
集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ
−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。天然な、およびＰＥＧ化インターフェ
ロン−アルファのサンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより
分析する。

インターフェロン−アルファ−（アルファ２，６）−シアリル−ＰＥＧの調製。Ｏ−結
合ＧｌｃＮＡｃのみを含むインターフェロン−アルファを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ
Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解す
る。この溶液を１ｍＭ ＣＭＰ−シアル酸−ＰＥＧおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ６Ｇｌｃ
ＮＡｃＩまたはＩＩと３２℃で２日間インキューベーションする。シアル酸−ＰＥＧの取
り込みを監視するために、反応の小アリコートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−蛍光リガンドを
加え；ペプチドへの取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してト
ーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。ペ
プチドへの蛍光標識の取り込みは、イン−ラインの蛍光検出器を使用して定量する。２日
後、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３００
０ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成
物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩ
ＥＦ分析を使用して分析する。天然な、およびＰＥＧ化インターフェロン−アルファのサ
ンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
２１．ＣＨＯ細胞で生産されたＧ−ＣＳＦのグリコＰＥＧ化
アシアロ−顆粒球−コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）の調製。ＣＨＯ細胞で生産された
Ｇ−ＣＳＦを２．５ｍｇ／ｍＬで５０ｍＭ Ｔｒｉｓ ５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐ
Ｈ７．４、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＣａＣｌ_２に溶解し、そして５００μＬにＣ
ｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心フィルター中で濃縮する。この溶液を３００ｍＵ／
ｍＬのノイラミニダーゼＩＩ（ビブリオ コレラ：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａｅ）と
１６時間、３２℃でインキューベーションする。反応を監視するために、反応の小アリコ
ートを適当なバッファーで希釈し、そしてＩＥＦゲルを行う。次いで反応混合物は前洗浄
したＮ−（ｐ−アミノフェニル）オキサミン酸−アガロース結合体（８００μＬ／ｍＬ反
応容量）に加え、そして洗浄したビーズを２４時間、４℃で穏やかに回転する。混合物を
１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして上清を集める。ビーズをＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッフ
ァーで３回洗浄し、０．４ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回、そして０．２ｍ
ＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回洗浄し、すべての上清をプールする。上清は４
℃で５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に
対して透析し、そして５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．
０５％ＮａＮ_３に対してさらに２回透析する。次いで透析した溶液はＣｅｎｔｒｉｃｏｎ
Ｐｌｕｓ２０遠心フィルターを使用して濃縮し、そして−２０℃で保存する。ＩＥＦゲ
ルに関する条件は、インビトロゲンにより提供される手順および試薬に従い泳動する。天
然な、および脱シアリル化Ｇ−ＣＳＦのサンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ
−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

Ｇ−ＣＳＦ−（アルファ２，３）−シアリル−ＰＥＧの調製。脱シアリル化Ｇ−ＣＳＦ
を２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５
％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍＭ ＣＭＰ−シアル酸−ＰＥＧおよ
び０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ１と３２℃で２日間インキューベーションする。シアル
酸−ＰＥＧの取り込みを監視するために、反応の小アリコートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−
蛍光リガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）
を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により遊離標識から
分離する。ペプチドへの蛍光標識の取り込みは、イン−ラインの蛍光検出器を使用して定
量する。２日後、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハ
ースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める
。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡ
ＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。天然な、およびＰＥＧ化Ｇ−ＣＳＦのサンプ
ルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

Ｇ−ＣＳＦ−（アルファ２，８）−シアリル−ＰＥＧの調製。アルファ２，３−シアリ
ル化Ｏ−結合グリカンを含むＣＨＯ細胞で生産されたＧ−ＣＳＦを２．５ｍｇ／ｍＬで、
５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２
に溶解する。この溶液を１ｍＭ ＣＭＰ−シアル酸−ＰＥＧおよび０．１Ｕ／ｍＬのＣＳ
Ｔ−ＩＩと３２℃で２日間インキューベーションする。シアル酸−ＰＥＧの取り込みを監
視するために、反応の小アリコートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−蛍光リガンドを加え；ペプ
チドへの取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハ
ースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。ペプチドへの
蛍光標識の取り込みは、イン−ラインの蛍光検出器を使用して定量する。２日後、反応混
合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ調製
カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、イン
ビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を
使用して分析する。天然な、およびＰＥＧ化Ｇ−ＣＳＦのサンプルを水に対して透析し、
そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

Ｇ−ＣＳＦ−（アルファ２，６）−シアリル−ＰＥＧの調製。Ｏ−結合ＧａｌＮＡｃの
みを含むＧ−ＣＳＦを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ
ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍＭ ＣＭＰ−シ
アル酸−ＰＥＧおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ６ＧａｌＮＡｃＩまたはＩＩと３２℃で２日
間インキューベーションする。シアル酸−ＰＥＧの取り込みを監視するために、反応の小
アリコートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−蛍光リガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識
は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カ
ラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。ペプチドへの蛍光標識の取り込みは、イ
ン−ラインの蛍光検出器を使用して定量する。２日後、反応混合物はＰＢＳバッファー（
ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、
そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給され
る手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。天然な
、およびＰＥＧ化Ｇ−ＣＳＦのサンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ
ＭＳにより分析する。
２２．ＣＨＯ細胞で生産されたＥＰＯのＯ−結合グリカンのグリコＰＥＧ化
Ｏ−結合ＥＰＯ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）の調製。元々ＣＨＯ細胞で生産されたア
シアロ−ＥＰＯを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ Ｎａ
Ｃｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を５ｍＭ ＣＭＰ−ＳＡお
よび０．１Ｕ／ｍＬ ＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキューベーションする。シア
ル酸のＮ−結合グリカンへの取り込みを監視するために、反応の小アリコートにＣＭＰ−
ＳＡ−^１４Ｃを加え；ペプチドは、メタノール、水を使用してトーソー ハースＧ３００
０ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により分離し、そして生成物は放射能検出器を使用して検
出する。反応が完了した時、溶液はＣｅｎｔｒｉｃｏｎ−２０フィルターを使用して濃縮
する。残る溶液はＣＭＰ−ＳＡがもはや検出できなくなるまで０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ（ｐ
Ｈ７．２）、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３とバッファーと交換して７．２
ｍＬの最終容量とする。次いで残りを０．０５Ｍ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．２）、０．１５Ｍ
ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に２．５ｍｇ／ｍＬタンパク質で再懸濁する。溶液はＯ
−結合部位をグルコシル化するために、１ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）お
よびＳＴ３Ｇａｌ１と３２℃で２日間インキューベーションする。シアル酸−ＰＥＧの取
り込みを監視するために反応の小アリコートは、トーソー ハースＴＳＫ−ｇｅｌ−３０
００分析カラムを使用したゲル濾過により分離し、ＰＢＳｐＨ７．０で溶出し、そしてＵ
Ｖ検出により分析する。反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．０
）を使用してトーソー ハースＴＳＫ−ｇｅｌ−３０００調製カラムを使用して精製し、
ＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順
および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水
に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
２３．抗体のグリコＰＥＧ化
この実施例は、抗体分子のＯ−結合グリカンをＰＥＧ化するための手順を説明する。こ
こでＥｎｂｒｅｌ（商標）は例として使用するが、当業者はこの手順が多くの抗体分子に
使用できると考えるだろう。

Ｅｎｂｒｅｌ（商標）−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）の調製。ＰＥＧ化の前にシアリル
化されたＯ−結合グリカンを持つか、または持たないいずれかのＥｎｂｒｅｌ（商標）（
ＴＮＦ−レセプター−ＩｇＧ_１−キメラ）を、２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ
−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．
２に溶解する。この溶液を５ｍＭのＵＤＰ−ガラクトースおよび０．１Ｕ／ｍＬのガラク
トシルトランスフェラーゼと３２℃で２日間インキューベーションしてＦｃ領域グルカン
をガラクトースでキャップする。ガラクトースの取り込みを監視するために、反応の小ア
リコートに^１４Ｃ−ガラクトース−ＵＤＰリガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識
は、メタノールおよび水でトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過によ
り遊離標識から分離する。放射性標識のペプチドへの取り込みは、イン−ライン検出器を
使用して定量する。

反応が完了した時、溶液を１ｍＭのＣＭＰ−シアル酸−リンカーＰＥＧ（１０ＫＤａ）
および０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキューベーションする。シ
アル酸−リンカー−ＰＥＧの取り込みを監視するために、ペプチドはＰＢＳバッファー（
ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでゲル濾過により分
離する。反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してト
ーソー ハースＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ
吸収に基づき画分を集める。生成物を含む画分を合わせ、濃縮し、バッファー交換し、そ
して凍結乾燥する。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に
従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析
し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
２４．Ｒｅｍｉｃａｄｅ（商標）抗体のグリコＰＥＧ化
この実施例は、ＰＥＧ分子をＦｃ領域グリカンに導入することにより組換え抗体分子を
グリコＰＥＧ化するための手順を説明する。ここでＲｅｍｉｃａｄｅ（商標）、ＴＮＦ−
Ｒ：ＩｇＧＦｃ領域融合タンパク質は例示ペプチドである。

Ｒｅｍｉｃａｄｅ（商標）−Ｇａｌ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）の調製。Ｒｅｍｉｃａｄｅ
ｌ（商標）を、２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣ
ｌ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍ
ＭのＵＤＰ−ガラクトース−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）および０．１Ｕ／ｍＬのガラクトシル
トランスフェラーゼと３２℃で２日間インキューベーションしてＦｃ領域グルカンにＰＥ
Ｇを導入する。ガラクトースの取り込みを監視するために、反応の小アリコートに^１４Ｃ
−ガラクトース−ＵＤＰリガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳバッフ
ァー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過
により遊離標識から分離する。放射性標識のペプチドへの取り込みは、イン−ライン放射
能検出器を使用して定量する。

反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー
ハースＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づ
き画分を集める。生成物を含む画分を合わせ、濃縮し、バッファー交換し、そして凍結乾
燥する。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ
−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そして
ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
２５．ＧｌｃＮＡｃ−ＡＳＮ構造の生成およびＰＥＧ化：酵母で生産されたＴＰＡ
この実施例は、酵母で発現されたＴＰＡのようなペプチド上のＰＥＧ化ＧｌｃＮＡｃ−
ＡＳＮ構造の調製を説明する。

酵母での発現は、１つのＮ−結合マンナン型構造を含むＴＰＡを生じると予想される。
この組換え糖タンパク質は最初にエンドグリコシダーゼＨで処理してペプチドのアスパラ
ギン（Ａｓｎ）残基上にＧｌｃＮＡｃ構造を生成する。

次いでペプチド／タンパク質骨格上のＧｌｃＮＡｃ−Ａｓｎ構造は、ガラクトースまた
はガラクトース−ＰＥＧで、それぞれＵＤＰ−ガラクトースまたはＵＤＰ−ガラクトース
−６−ＰＥＧ、およびＧａｌＴ１のようなガラクトシルトランスフェラーゼを使用して修
飾する。１例では、ガラクトース−ＰＥＧは末端残基である。２例目はガラクトースがさ
らにＳＡ−ＰＥＧでＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ供与体およびＳＴ３ＧａｌＩＩＩのようなシア
リルトランスフェラーゼを使用して修飾される。別の態様では、ペプチド／タンパク質骨
格上のＧｌｃＮＡｃ−Ａｓｎ構造が上記のようにガラクトシル化およびシアリル化され、
そしてさらにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧおよびカンピロバクター ジェジュニ（Ｃａｍｐｙｌ
ｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ）ｃｓｔ−ＩＩ遺伝子によりコードされる酵素のようなα
２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してシアリル化される。
２６．ＧｌｃＮＡｃ−ＡＳＮ構造の生成およびＰＥＧ化：サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａ
ｒｏｍｙｃｅｓ）で生産されたＧＭ−ＣＳＦ
この実施例は、ＰＥＧ化されたＧｌｃＮＡｃ−Ａｓｎ構造を持つ組織アクチベーターの
調製を説明する。

酵母で発現される組換えＧＭ−ＣＳＦは、２Ｎ−結合および２Ｏ−結合グリカンを含む
と予想される。Ｎ−結合グリカンは分枝マンナン型であるはずである。この組換え糖タン
パク質は、エンドグリコシダーゼＨ、エンドグリコシダーゼ−Ｆ１、エンドグリコシダー
ゼ−Ｆ２、エンドグリコシダーゼ−Ｆ３、エンドグリコシダーゼ−Ｍからなる群から選択
されるエンドグリコシダーゼ単独で、またはマンノシダーゼＩ、ＩＩおよびＩＩＩと組み
合わせて処理してペプチド／タンパク質骨格上のアスパラギン（Ａｓｎ）残基上にＧｌｃ
ＮＡｃ結節（ｎｕｂ）を生成する。

次いでペプチド／タンパク質骨格上のＧｌｃＮＡｃ−Ａｓｎ構造は、ガラクトースまた
はガラクトース−ＰＥＧで、それぞれＵＤＰ−ガラクトースまたはＵＤＰ−ガラクトース
−６−ＰＥＧ、およびＧａｌＴ１のようなガラクトシルトランスフェラーゼを使用して修
飾される。１例では、ガラクトース−ＰＥＧは末端残基である。２例目はガラクトースが
さらにＳＡ−ＰＥＧでＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ供与体およびＳＴ３ＧａｌＩＩＩのようなシ
アリルトランスフェラーゼを使用して修飾される。別の態様では、ペプチド／タンパク質
骨格上のＧｌｃＮＡｃ−Ａｓｎ構造がガラクトシル化され、そして上記のようにシアリル
化され、次いでＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧおよびカンピロバクター ジェジュニ（Ｃａｍｐｙ
ｌｏｂａｃｔｅｒ ｊｅｊｕｎｉ）ｃｓｔ−ＩＩ遺伝子によりコードされる酵素のような
α２，８−シアリルトランスフェラーゼを使用してさらにシアリル化される。
Ｃ．低分子の複合糖質化（Ｇｌｙｃｏ−ｃｏｎｊｕｇａｔｉｏｎ）
２７．ＣＭＰ−ＳＡ−レブリネートの合成
この実施例はＣＭＰ−ＳＡ−レブリネートの合成手順を説明する。

２−レブリンアミド−２−デオキシ−Ｄ−マンノピラノースの調製。イソブチルクロロ
ホルメート（１００μＬ、０．７７ミリモル）を、レブリン酸（８６μＬ、０．８４ミリ
モル）、無水ＴＨＦ（３ｍＬ）およびトリエチルアミン（１２７μＬ、０．９１ミリモル
）の溶液に滴下した。この溶液を３時間、室温で撹拌し、次いでＤ−マンノサミンヒドロ
クロライド（１５１ｍｇ、０．７ミリモル）、トリエチルアミン（１２７μＬ、０．９１
ミリモル）、ＴＨＦ（２ｍＬ）および水（２ｍＬ）を含む溶液に滴下した。反応混合物を
１５時間撹拌し、次いでロータリーエバポレーションにより濃縮乾固した。クロマトグラ
フィー（シリカ、５〜１５％のＭｅＯＨ／ＣＨ_２Ｃｌ_２の段階勾配）を使用して生成物を
単離し、０．１５６ｇ（７３％収率）の白色固体を得た：R_f= 0.41 (シリカ, CHCl₃/MeOH
/ 水 6/4/1); ¹H NMR (D₂O, 500 MHz) 2.23 (s, 3H), 2.24 (s, 3H), 2.57 (td, J=6.54,
3.68, 2H) 2.63 (t, J=6.71, 2H), 2.86-2.90 (m, 4H),3.42 (m, 1H), 3.53 (t, J=9.76
, 1H), 3.64 (t, J=9.43, 1H), 3.80-3.91 (m, 4H), 4.04 (dd, J=9.79, 4.71, 1H), 4.3
1 (dd, J=4.63, 1.14, 1H), 4.45 (dd, J=4.16, 1.13, 1H), 5.02 (d, J=1.29, 1H), 5.1
1 (s, J=1.30, 1H), MS (ES); 理論値 C₁₁H₁₉NO₇, 277.27; 測定値 [M+1] 277.9。

５−レブリンアミド−３，５−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロ
ピラノスロネートの調製。ピルビン酸ナトリウム（０．６１６ｇ、５．６ミリモル）およ
びＮ−アセチルノイラミン酸アルドラーゼ（５０Ｕ）を、２−レブリンアミド−２−デオ
キシ−Ｄ−マンノピラノース（０．１５６ｇ、０．５６ミリモル）の溶液（０．１Ｍ Ｈ
ＥＰＥＳ、ｐＨ７．５中）に加えた。反応混合物を３７℃に２０時間加熱し、その後、凍
結した。次いで反応混合物はＣ１８シリカを通して濾過し、凍結し、そして凍結乾燥させ
た。粗固体はフラッシュクロマトグラフィー（シリカ、最初に１０〜４０％ＭｅＯＨ／Ｃ
Ｈ_２Ｃｌ_２、次いでＣＨ_２Ｃｌ_２／ＭｅＯＨ／Ｈ_２Ｏ ６／４／０．５を使用する）を使
用して精製した。適切な画分を合わせ、そして濃縮して４５ｍｇ（８０％収率）の白色固
体を得た：R_f=0.15 (シリカ, CHCl₃/MeOH/水 6/4/1); ¹H NMR (D₂O, 500MHz)81.82 (t, J
=11.9, 1H), 2.21 (dd, J=13.76, 4.84, 1H), 2.23 (s, 3H), 2.57 (app q, J=6.6, 2H),
2.86-2.95 (m, 2H), 3.15-3.18 (m, 1H), 3.28-3.61 (複合, 1H), 3.60 (dd, J=11.91,
6.66, 1H), 3.75 (td, J=6.65, 2.62, 1H), 3.84 (dd, J=11.89, 2.65, 1H), 3.88-4.01
(複合, 2H), 4.04 (td, J=11.8, 4.67, 1H), MS (ES); 理論値 C₁₄H₂₃NO₁₀, 365.33; 測
定値 ([M-1]^-), 363.97。

シチジン−５'−モノホスホリル−（５−レブリンアミド−３，５−ジデオキシ−β−
Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート）の調製。５−レブリンアミ
ド−３，５−ジデオキシ−Ｄ−グリセロ−Ｄ−ガラクト−２−ノヌロピラノスロネート（
５０ｍｇ、１３７マイクロモル）を２ｍＬの１００ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．５バッフ
ァーに溶解し、そして１ＭのＭｎＣｌ_２（３００μＬ、３００マイクロモル）を加えた。
ＣＴＰ−２Ｎａ^＋（７９ｍｇ、１．５マイクロモル）を５ｍＬのＨＥＰＥＳバッファーに
溶解し、そして糖に加えた。シアリルトランスフェラーゼ／ＣＭＰ−ノイラミン酸シンテ
ターゼ融合酵素（１１Ｕ）を加え、そして反応混合物を室温で４５時間撹拌した。反応混
合物を１０，０００ＭＷＣＯフィルターに通して濾過し、そして濾液（これは反応の生成
物を含む）をさらに精製せずに直接使用した：Ｒ_ｆ＝０．３５（シリカ、ＩＰＡ／水／Ｎ
Ｈ_４ＯＨ ７／２／１）。
２８．ＣＨＯ細胞で生産されるグルコセレブロシダーゼ−マンノース−６−ホスフェート
この実施例はマンノース−６−ホスフェートをＣＨＯ細胞で生産されたグルコセレブロ
シダーゼのようなペプチドに複合糖質化する手順を説明する。

アシアロ−グルコセラミダーゼの調製。ＣＨＯ細胞で生産されたグルコセレブロシダー
ゼを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．４
、０．１５Ｍ ＮａＣｌに溶解し、これを３００ｍＵ／ｍＬのシアリダーゼ−アガロース
結合体と１６時間、３２℃でインキューベーションする。反応を監視するために、反応の
小アリコートを適当なバッファーで希釈し、そしてＩＥＦゲルおよびＳＤＳ−ＰＡＧＥを
インビトロゲンの手順に従い行う。混合物を１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして上清を
集める。ビーズはＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで３回、０．４ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴ
Ａバッファーで１回、そして０．２ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回洗浄する
。すべての上清をプールする。上清は４℃で５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、
１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析し、そしてさらに２回、５０ｍＭ Ｔ
ｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析する。
次いで透析した溶液はＣｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心フィルターを使用して濃縮
する。反応の生成物はインビトロゲンにより供給される手順および試薬に従い、ＳＤＳ−
ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭ
ＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

グルコセレブロシダーゼ−ＳＡ−リンカー−マンノース−６−ホスフェートの調製（手
順１）。上からのアシアロ−グルコセレブロシダーゼを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ
Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する
。この溶液を１ｍＭのＣＭＰ−シアル酸−リンカー−Ｍａｎ−６−ホスフェートおよび０
．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキューベーションする。シアル酸−
リンカー−Ｍａｎ−６−ホスフェートの取り込みを監視するために、反応の小アリコート
にＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−蛍光リガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳ
バッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００分析カ
ラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。蛍光標識のペプチドへの取り込みは、イ
ン−ライン蛍光検出器を使用して定量する。反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッ
ファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハース ＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００調製カラ
ムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、インビト
ロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用
して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分
析する。

グルコセレブロシダーゼ−ＳＡ−リンカー−マンノース−６−ホスフェートの調製（手
順２）。ＣＨＯで生産されたが不完全にシアリル化されているグルコセレブロシダーゼを
２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％
ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍＭのＣＭＰ−シアル酸−リンカー−Ｍ
ａｎ−６−ホスフェートおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキ
ューベーションする。シアル酸−リンカー−Ｍａｎ−６−ホスフェートの取り込みを監視
するために、反応の小アリコートにＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ−蛍光リガンドを加え；ペプチ
ドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハース
ＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００分析カラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。蛍光標
識のペプチドへの取り込みは、イン−ライン蛍光検出器を使用して定量する。反応が完了
した時、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハース Ｔ
ＳＫ−Ｇｅｌ−３０００調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集
める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−
ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭ
ＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
２９．ミトラマイシンの抗体への複合糖質化
この実施例は、ミトラマイシンのような低分子を哺乳動物細胞で生産された抗体分子の
Ｆｃ領域グリカンへ複合糖質化するため手順を説明する。ここで抗体Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ
（商標）を使用するが、当業者はこの方法が多くの他の抗体に使用できると考えるだろう
。

Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（商標）−Ｇａｌ−リンカー−ミトラマイシンの調製。Ｈｅｒｃｅ
ｐｔｉｎ（商標）を２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ Ｎ
ａＣｌ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を
１ｍＭのＵＤＰ−ガラクトース−リンカー−ミトラマイシンおよび０．１Ｕ／ｍＬのガラ
クトシルトランスフェラーゼと３２℃で２日間インキューベーションしてミトラマイシン
をＦｃ領域のグリカンに導入する。ガラクトースの取り込みを監視するために、反応の小
アリコートに^１４Ｃ−ガラクトース−ＵＤＰリガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標
識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析
カラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。放射性標識のペプチドへの取り込みは
、イン−ライン放射能検出器を使用して定量する。

反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー
ハース ＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基
づき画分を集める。生成物を含む画分を合わせ、濃縮し、バッファー交換し、そして凍結
乾燥する。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤ
Ｓ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そし
てＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
３０．ゲルダナマイシンの抗体への複合糖質化
この実施例は、ゲルダナマイシンのような低分子をＣＨＯ細胞で生産されたＲｉｔｕｘ
ａｎ（商標）のような抗体のＦｃ領域グリカンへ複合糖質化するための手順を説明する。
ここで抗体Ｒｉｔｕｘａｎ（商標）を使用するが、当業者はこの方法が多くの他の抗体に
使用できると考えるだろう。

Ｒｉｔｕｘａｎ（商標）−Ｇａｌ−リンカー−ゲルダナマイシンの調製。Ｒｉｔｕｘａ
ｎ（商標）を２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ
、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を１ｍＭ
のＵＤＰ−ガラクトース−リンカー−ゲルダナマイシンおよび０．１Ｕ／ｍＬのガラクト
シルトランスフェラーゼと３２℃で２日間インキューベーションしてゲルダナマイシンを
Ｆｃ領域のグリカンに導入する。ガラクトースの取り込みを監視するために、反応の小ア
リコートに^１４Ｃ−ガラクトース−ＵＤＰリガンドを加え；ペプチドへの標識の取り込み
は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カ
ラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。放射性標識のペプチドへの取り込みは、
イン−ライン放射能検出器を使用して定量する。

反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー
ハース ＴＳＫ−Ｇｅｌ−３０００調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基
づき画分を集める。生成物を含む画分を合わせ、濃縮し、バッファー交換し、そして凍結
乾燥する。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤ
Ｓ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そし
てＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
Ｄ．ペプチドの複合糖質化（Ｇｌｙｃｏ−ｃｏｎｊｕｇａｔｉｏｎ）
３１．トランスフェリン−ＧＤＮＦ
この実施例はタンパク質の複合糖質化、そして特にトランスフェリンをＧＤＮＦに複合
糖質化する手順について説明する。トランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＵＤＰ
−はトランスフェリンから調製する。ガラクトース残基をＧＮＤＦグリカンから除去し、
そしてトランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＵＤＰをＧＮＤＦグリカンにガラク
トシルトランスフェラーゼを使用して結合する。

アガラクト−ＧＤＮＦの調製。ＮＳＯ細胞（ＮＳＯマウス骨髄腫細胞）で生産されたＧ
ＤＮＦを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７
．４、０．１５Ｍ ＮａＣｌに溶解し、そして３００ｍＵ／ｍＬのベータ−ガラクトシダ
ーゼ−アガロース結合体と１６時間、３２℃でインキューベーションする。反応を監視す
るために、反応の小アリコートを適当なバッファーで希釈し、そしてＩＥＦゲルをインビ
トロゲンの手順に従い行う。混合物を１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして上清を集める
。上清は４℃で５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％
ＮａＮ_３に対して透析し、そしてさらに２回、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．４
、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析する。透析した溶液は次いでＣｅｎ
ｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心フィルターを使用して濃縮し、そして−２０℃で保存す
る。ＩＥＦゲルの条件はインビトロゲンにより提供される手順および試薬に従い泳動する
。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦにより分析する。

トランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＵＤＰの調製。アシアロ−トランスフェ
リンを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．
０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液をＣＭＰ−シアル酸−リンカー−Ｇａ
ｌ−ＵＤＰ（１モル当量のヌクレオチド糖をトランスフェリンに加えるモル量）および０
．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキューベーションする。シアル酸の
取り込みを監視するために、反応の小アリコートに^１４Ｃ−ＳＡ−ＵＤＰリガンドを加え
；ペプチドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー
ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により遊離標識から分離する。放射能標
識のペプチドへの取り込みは、イン−ライン放射能検出器を使用して定量する。

この溶液を５ｍＭのＣＭＰ−シアル酸および０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３（未反応
トランスフェリングリカンをキャップするために）と３２℃で２日間インキューベーショ
ンする。ペプチドへの取り込みは、イン−ラインＵＶ検出器を使用して定量する。２日後
、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハースＧ３０００
ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物
は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥ
Ｆ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ
ＭＳにより分析する。

トランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＧＤＮＦの調製。上記のように調製した
トランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＵＤＰを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ
Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０５％ＮａＮ_３、
ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を２．５ｍｇ／ｍＬのアガラクト−ＧＤＮＦおよび０．
１Ｕ／ｍＬのガラクトシルトランスフェラーゼと３２℃で２日間インキューベーションす
る。ガラクトースの取り込みを監視するために、反応の小アリコートに^１４Ｃ−ガラクト
ース−ＵＤＰリガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳバッファー（ｐＨ
７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により遊離
標識から分離する。放射性標識のペプチドへの取り込みは、イン−ライン放射能検出器を
使用して定量する。

反応が完了した時、溶液を５ｍＭのＵＤＰ−Ｇａｌおよび０．１Ｕ／ｍＬのガラクトシ
ルトランスフェラーゼ（未反応トランスフェリングリカンをキャップするために）と３２
℃で２日間インキューベーションし、続いて５ｍＭのＣＭＰ−ＳＡおよび０．１Ｕ／ｍＬ
のＳＴ３Ｇａｌ３を加える。さらに２日後、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１
）を使用したトーソー ハースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、ＵＶ吸収に
基づき画分を集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬
に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透
析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
３２．グルコセレブロシダーゼ−トランスフェリン
この実施例はタンパク質の複合糖質化、そして特にトランスフェリンをグルコセレブロ
シダーゼに複合糖質化する手順について説明する。ＧｌｃＮＡｃ−ＡＳＮ構造をグルコセ
レブロシダーゼ上に構築し、そしてトランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＵＤＰ
はＧＮＤＦ ＧｌｃＮＡｃ−ＡＳＮ構造にガラクトシルトランスフェラーゼを使用して結
合する。

ＧｌｃＮＡｃ−グルコセレブロシダーゼ（Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標））の調製。ＣＨＯ
細胞で生産されたＣｅｒｅｚｙｍｅ（商標）（グルコセレブロシダーゼ）を２．５ｍｇ／
ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、０．１５Ｍ Ｎ
ａＣｌに溶解し、そして３００ｍＵ／ｍＬのエンド−Ｈ−アガロース結合体と１６時間、
３２℃でインキューベーションする。反応を監視するために、反応の小アリコートを適当
なバッファーで希釈し、そしてＩＥＦゲルおよびＳＤＳ−ＰＡＧＥをインビトロゲンの手
順に従い行う。混合物を１０，０００ｒｐｍで遠心し、そして上清を集める。ビーズはＴ
ｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで３回、０．４ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回
、そして０．２ｍＬのＴｒｉｓ−ＥＤＴＡバッファーで１回洗浄し、そしてすべての上清
をプールする。上清は４℃で５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ
、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析し、そしてさらに２回、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ
、ｐＨ７．４、１Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３に対して透析する。次いで透析した
溶液はＣｅｎｔｒｉｃｏｎ Ｐｌｕｓ２０遠心フィルターを使用して濃縮する。反応の生
成物はインビトロゲンにより供給される手順および試薬に従い、ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび
ＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯ
Ｆ ＭＳにより分析する。

トランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−グルコセレブロシダーゼの調製。上から
のトランスフェリン−ＳＡ−リンカー−Ｇａｌ−ＵＤＰを２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ
Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＭｎＣｌ_２、０．０５％ＮａＮ_３
、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を２．５ｍｇ／ｍＬのＧｌｃＮＡｃ−グルコセレブロ
シダーゼおよび０．１Ｕ／ｍのガラクトシルトランスフェラーゼと３２℃で２日間インキ
ューベーションする。グルコセレブロシダーゼの取り込みを監視するために、ペプチドは
、ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラ
ムでのゲル濾過により分離し、そしてＵ吸収により生成物を検出する。反応混合物はＰＢ
Ｓバッファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使
用して精製し、ＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより
供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する
。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。
３３．ＥＰＯ−トランスフェリン
この実施例はタンパク質のＯ−結合グリカンへの複合糖質化、そして特にトランスフェ
リンをＥＰＯに複合糖質化する手順について説明する。シアル酸残基はＥＰＯのＯ−結合
グリカンから除去し、そしてＥＰＯ−ＳＡ−リンカー−ＳＡ−ＣＭＰを調製する。ＥＰＯ
−ＳＡ−リンカー−ＳＡ−ＣＭＰをアシアロトランスフェリンにＳＴ３Ｇａｌ３で複合糖
質化する。

Ｏ−結合アシアロ−ＥＰＯの調製。ＣＨＯ細胞で生産されたＥＰＯ（エリトロポエチン
）を２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．４
、０．１５Ｍ ＮａＣｌに溶解し、これを３００ｍＵのシアリダーゼ（ビブリオ コレラ
：Ｖｉｂｒｉｏ ｃｈｏｌｅｒａ）−アガロース結合体と１６時間、３２℃でインキュー
ベーションする。反応を監視するために、反応の小アリコートを適当なバッファーで希釈
し、そしてインビトロゲンの手順に従いＩＥＦゲルを行う。混合物を１０，０００ｒｐｍ
で遠心し、そして上清を集める。上清は約２．５ｍｇ／ｍＬのＥＯＰ濃度に５０ｍＭ Ｔ
ｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２中で濃縮する
。この溶液を５ｍＭのＣＭＰ−シアル酸および０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃
で２日間インキューベーションする。シアル酸の取り込みを監視するために、反応の小ア
リコートにＣＭＰ−ＳＡ−蛍光リガンドを加え；ペプチドへ取り込まれた標識は、ＰＢＳ
バッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲ
ル濾過により遊離標識から分離する。反応が完了した時、反応混合物はＰＢＳバッファー
（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハース Ｇ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製
し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供給
される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。サ
ンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

ＥＰＯ−ＳＡ−リンカー−ＳＡ−ＣＭＰの調製。５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１
５Ｍ ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２中のＯ−結合アシアロ−ＥＰＯ２．５
ｍｇ／ｍＬ。この溶液を１ｍＭのＣＭＰ−シアル酸−リンカー−ＳＡ−ＣＭＰおよび０．
１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキューベーションする。シアル酸−リ
ンカー−ＳＡ−ＣＭＰの取り込みを監視するために、ペプチドはＰＢＳバッファー（ｐＨ
７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により分離
する。

２日後、反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハース
Ｇ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そしてＵＶ吸収に基づき画分を集める。反
応の生成物は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥ
およびＩＥＦ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ
−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

トランスフェリン−ＳＡ−リンカー−ＳＡ−ＥＰＯの調製。上からのＥＰＯ−ＳＡ−リ
ンカー−ＳＡ−ＣＭＰは２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ
ＮａＣｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を２．５ｍｇ／ｍＬ
のアシアロ−トランスフェリンおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間
インキューベーションする。トランスフェリンの取り込みを監視するために、ペプチドは
ＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラム
でのゲル濾過により分離し、そして生成物をＵＶ吸収により検出する。反応が完了した時
、溶液を５ｍＭのＣＭＰ−ＳＡおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３（未反応のトラン
スフェリングリカンをキャップするために）と３２℃で２日間インキューベーションする
。反応混合物はＰＢＳバッファー（ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００
ＳＷ調製カラムを使用して精製し、そして画分をＵＶ吸収に基づき集める。反応の生成物
は、インビトロゲンにより供給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥ
Ｆ分析を使用して分析する。サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ
ＭＳにより分析する。
３４．ＥＰＯ−ＧＤＮＦ
この実施例はペプチドの複合糖質化の手順、そして特にＥＰＯ−ＳＡ−リンカー−ＳＡ
−ＧＤＮＦの調製について説明する。

ＥＰＯ−ＳＡ−リンカー−ＳＡ−ＧＤＮＦの調製。上からのＥＰＯ−ＳＡ−リンカー−
ＳＡ−ＣＭＰは２．５ｍｇ／ｍＬで、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣ
ｌ、０．０５％ＮａＮ_３、ｐＨ７．２に溶解する。この溶液を２．５ｍｇ／ｍＬのＧＤＮ
Ｆ（ＮＳＯで生産）および０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３と３２℃で２日間インキュー
ベーションする。ＧＤＮＦの取り込みを監視するために、ペプチドはＰＢＳバッファー（
ｐＨ７．１）を使用してトーソー ハースＧ３０００ＳＷ分析カラムでのゲル濾過により
分離し、そして生成物をＵＶ吸収により検出する。反応が完了した時、溶液を５ｍＭのＣ
ＭＰ−ＳＡおよび０．１Ｕ／ｍＬのＳＴ３Ｇａｌ３（未反応のＧＤＮＦグリカンをキャッ
プするために）と３２℃で２日間インキューベーションする。反応混合物はＰＢＳバッフ
ァー（ｐＨ７．１）を使用したトーソー ハースＧ３０００ＳＷ調製カラムを使用して精
製し、そして画分をＵＶ吸収に基づき集める。反応の生成物は、インビトロゲンにより供
給される手順および試薬に従いＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＩＥＦ分析を使用して分析する。
サンプルを水に対して透析し、そしてＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳにより分析する。

本明細書に引用するすべての特許、特許出願、および公報の開示は、引用により全部、
本明細書に編入する。

本発明は具体的な態様に関して開示してきたが、本発明の他の態様および変更は本発明
の精神および範囲から逸脱することなく当業者により考案され得ることは明らかである。
添付する特許請求の範囲は、すべてのそのような態様および均等な変更物を含むと解釈さ
れるものとする。

本発明を具体的に説明する目的で、本発明の特定な態様を描く図面がある。しかし本発
明は図面に表す態様のまさにその組み合わせ方および手段に限定されない。
図１Ａから図１Ｚおよび図１ＡＡから図１ＣＣから成る図１は、本発明の方法に有用なペプチドの一覧である。 図２は、トリマンノシルコア（ｃｏｒｅ）グリカン（左側）およびバイセクティングＧｌｃＮＡｃを有するグリカンの酵素的生成法を表すスキームである。 図３は、基本的なトリマンノシルコア構造および種々の完成度の複雑な鎖を表すスキームである。バイセクティングＧｌｃＮＡｃ残基を含まない複雑な炭水化物グリカン構造から基本的なトリマンノシルコア構造のインビトロの酵素的生成は、バイセクティングＧｌｃＮＡｃを含むものからのグリカン構造の生成のように示す。記号：四角：ＧｌｃＮＡｃ；明るい丸：Ｍｎ；暗い丸：Ｇａｌ；三角：ＮｅｕＡｃ。 図４は、トリマンノシルコアおよびバイセクティングＧｌｃＮＡｃを有するグリカン（左側）から始まるシアリル化グリカン構造（右側）の酵素的生成のスキームである。 図５は、典型的な高マンノース含有グリカン（左側）および基本的なトリマンノシルコア構造に対するこの構造の酵素的減少法のスキームである。 図６は、典型的には植物細胞で生産されるＮ−結合グリカン構造を含むフコースおよびキシロースの図解である。 図７は、典型的には昆虫細胞で生産されるＮ−結合グリカン構造を含むフコースの図解である。 図８は、高マンノース構造を改作し、そしてそれから複雑な糖鎖を合成するための種々の経路を表すスキームである。記号：四角：ＧｌｃＮＡｃ；丸：Ｍａｎ；菱形：フコース；五角形：キシロース。 図９は、基本的なトリマンノシルコア構造から複雑な構造を合成するためのインビトロ法を表すスキームである。記号：暗い四角：ＧｌｃＮＡｃ；明るい丸：Ｍａｎ；暗い丸：Ｇａｌ；暗い三角：ＮｅｕＡｃ；ＧｎＴ：Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼ；ＧａｌＴ：ガラクトシルトランスフェラーゼ；ＳＴ：シアリルトランスフェラーゼ。 図１０は、基本的なトリマンノシルコア構造から合成することができる種々の複雑な構造を表すスキームである。記号：暗い四角：ＧｌｃＮＡｃ；明るい丸：Ｍａｎ；暗い丸：Ｇａｌ；暗い三角：ＮｅｕＡｃ；暗い菱形：フコース；ＦＴおよびＦｕｃＴ：フコシルトランスフェラーゼ；ＧａｌＴ：ガラクトシルトランスフェラーゼ；ＳＴ：シアリルトランスフェラーゼ；Ｌｅ：ルイス抗原；ＳＬｅ：シアリル化ルイス抗原。 図１１は、セリンまたはトレオニンから始まるＯ−結合糖ペプチドの調製スキームの例である。 図１２は、コア１から４と名付けられた４つの型のＯ−グリカン構造を表す一連の図解である。コア構造は点線で輪郭を描く。 図１３Ａおよび図１３Ｂからなる図１３は、炭水化物残基が第１世代の２アンテナ（ｂｉａｎｔｅｎｎａｒｙ）構造に戻るように改作された複雑な炭水化物構造および／または高マンノース高マンノース構造を含んでなる、本発明の例示態様を示す一連スキームである。水溶性ポリマー（ＷＳＰ）を持つ修飾糖を、次に戻し改作法（ｔｒｉｍｍｉｎｇ ｂａｃｋ ｐｒｏｃｅｓｓ）により暴露した１以上の糖残基に結合させる。 図１４は図２に示すスキームと同様であり、ここで高マンノース構造がマンノースに「戻し改作」され、次にこれから２アンテナ構造枝および水溶性ポリマーを持つ修飾糖を次に戻し改作法に暴露された１以上の糖残基に結合させる。 図１５は図２に示すスキームと同様であり、ここで高マンノースがＧｌｃＮＡｃに戻し改作され、これに第１マンノースが結合し、そして次に水溶性ポリマーを持つ修飾糖を、戻し改作法により暴露した１以上の糖残基に結合する。 図１６は図２に示すスキームと同様であり、ここで高マンノースがペプチドのＡｓｎに結合した第１ＧｌｃＮＡｃに戻し改作され、この後に続いて付加された１以上の糖残基に水溶性ポリマーを結合する。 図１７Ａおよび１７Ｂからなる図１７は、Ｎ−結合炭水化物が戻し改作され、そして続いて水溶性ポリマーを持つ修飾糖部分（ＧｌｃＮＡｃ）で誘導化されるスキームである。 図１８Ａおよび１８Ｂからなる図１８は、Ｎ−結合炭水化物が戻し改作され、そして続いて水溶性ポリマーを持つシアル酸部分で誘導化されるスキームである。 図１９は、Ｎ−結合炭水化物が戻し改作され、そして続いて１以上のシアル酸部分で誘導化され、そして水溶性ポリマーで誘導化されたシアル酸で終結するスキームである。 図２０は、Ｏ−結合サッカリドが「戻し改作」され、そして続いて水溶性ポリマーを持つ修飾糖に結合させる。例示のスキームでは、炭水化物部分が２アンテナ構造の第１世代に「戻し改作」される。 図２１は、Ｏ−結合糖ペプチドの炭水化物部分を戻し改作して、炭水化物部分に結合した水溶性ポリマーを有する修飾糖との結合物に利用することができるマンノースを生産すするための例示スキームである。 図２２Ａから図２２Ｃからなる図２２は、一連の例示スキームである。図２２ＡはＰＥＧ化糖の付加、続いて非−修飾糖の付加を説明するスキームである。図２２Ｂは１種類より多くの修飾糖を１つのグリカンへ付加することを説明するスキームである。図２２Ｃは異なる修飾糖のＯ−結合グリカンおよびＮ−結合グリカンへの付加を具体的に説明するスキームである。 図２３は結合を含むグリカン改造によるペプチドの治療的機能の種々の改善法の図解である。 図２４はゴーシェ病を処置するための治療用ペプチドのグリカン改造に関する１組のスキームである。 図２５は末端−マンノース−６−ホスフェート部分を有するグリカンを生成するためのグリカン改造に関するスキームである。 図２６はシアリル化後のＣＨＯ−生産グルコセレブロシダーゼ（Ｃｅｒｅｚｙｍｅ（商標））に見いだされるグリカン構造の配列を具体的に説明する図解である。 図２７Ａから２７Ｇからなる図２７は、顆粒球コロニージ刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）に関するグリカン構造を改造するための例示スキームを提供する。図２７Ａは、グリカンが結合するアミノ酸残基を示すＧ−ＣＳＦペプチド、およびそれに結合した例示グリカンの式を表す図解である。図２７Ｂから２７Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２７Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図２８Ａから２８ＡＡからなる図２８は、インターフェロン−アルファのグリカン構造を改造するための例示的スキームを説明する。図２８Ａはグリカンが結合するアミノ酸残基を示すインターフェロン−アルファ アイソフォーム１４ｃペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図２８Ｂから２８Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２８Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図２８Ｅはグリカンが結合するアミノ酸残基を示すインターフェロン−アルファ アイソフォーム１４ｃペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図２８Ｆから２８Ｎは、ペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２８Ｅ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図２８Ｏはグリカンが結合するアミノ酸残基を示すインターフェロン−アルファ アイソフォーム２ａまたは２ｂペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図２８Ｐから２８Ｗは、ペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２８Ｏ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図２８Ｘは改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すインターフェロン−アルファ ムチン融合ペプチド、およびそれに結する例示グリカンの式を表す図解である。図２８Ｙから２８ＡＡは、ペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２８Ｘ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図２８ＢＢは改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すインターフェロン−アルファ ムチン融合ペプチドおよびインターフェロン−アルファペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図２８ＣＣから２８ＥＥは、ペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２８ＢＢ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図２９Ａから２９Ｓからなる図２９は、インターフェロン−ベータのグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図２９Ａはグリカンが結合するアミノ酸残基を示すインターフェロン−ベータペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図２９Ｂから２９Ｏはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２９Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図２９Ｐはグリカンが結合するアミノ酸残基を示すインターフェロン−ベータペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図２９Ｑから２９Ｓはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図２９Ｐ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３０Ａから３０Ｄからなる図３０は、第ＶＩＩ因子および第ＶＩＩａ因子のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３０Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示す第ＶＩＩ因子および第ＶＩＩａ因子ペプチドＡ（実線）およびＢ（点線）、およびグリカンの式を表す図解である。図３０Ｂから３０Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３０Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３１Ａから３１Ｇからなる図３１は、第ＩＸ因子のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３１Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示す第ＩＸ因子ペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３１Ｂから３１Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３１Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３２Ａから３２Ｊからなる図３２は、αおよびβサブユニットを含んでなる濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３２Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示す濾胞刺激ホルモンペプチドＦＳＨαおよびＦＳＨβ、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３２Ｂから３２Ｊはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３２Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３３Ａから３３Ｊからなる図３３は、エリトロポエチン（ＥＰＯ）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３３Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＥＰＯペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３３Ｂから３３Ｊはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３３Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３４Ａから３４Ｋからなる図３４は、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３４Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＧＭ−ＣＳＦペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３４Ｂから３４Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３４Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３４Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＧＭ−ＣＳＦペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３４Ｉから３４Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３４Ｈ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３５Ａから３５Ｎからなる図３５は、インターフェロン−ガンマのグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３５Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すインターフェロン−ガンマペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３５Ｂから３５Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３５Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３５Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すインターフェロン−ガンマペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３５Ｉから３５Ｎはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３５Ｈ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３６Ａから３６Ｏからなる図３６は、α_１−アンチトリプシン（ＡＴＴ、またはα−１プロテアーゼインヒビター）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３６Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示ＡＴＴペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３６Ｂから３６Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３６Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３６Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＡＴＴペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３６Ｉから３６Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３６Ｈ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３６Ｌは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＡＴＴペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３６Ｍから３６Ｏはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３６Ｌ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３７Ａから３７Ｋからなる図３７は、グルコセレブロシダーゼのグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３７Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すグルコセレブロシダーゼペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３７Ｂから３７Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３７Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３７Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すグルコセレブロシダーゼペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３７Ｉから３７Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３７Ｈ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３８Ａから３８Ｗからなる図３８は、組織プラスミノーゲンアクチベーター（ＴＰＡ）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３８Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＴＰＡペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３８Ｂから３８Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３８Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３８Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＴＰＡペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３８Ｉから３８Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３８Ｈ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３８Ｌは改造を企図するグリカンに結合する残基を示す突然変異ＴＰＡペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３８Ｍから３８Ｏはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３８Ｌ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３８Ｐは改造を企図するグリカンに結合する残基を示す突然変異ＴＰＡペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３８Ｑから３８Ｓはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３８Ｐ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図３８Ｔは改造を企図するグリカンに結合する残基を示す突然変異ＴＰＡペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図３８Ｕから３８Ｗはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３８Ｔ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図３９Ａから３９Ｇからなる図３９は、インターロイキン−２（ＩＬ−２）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図３９Ａはグリカンが結合するアミノ酸残基を示すインターロイキン−２ペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図３９Ｂから３９Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図３９Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４０Ａから４０Ｎからなる図４０は、第ＶＩＩＩ因子のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４０Ａは第ＶＩＩＩペプチドのＮ−結合グリコシル化部位（ＡおよびＡ'）およびＯ−結合部位（Ｂ）に結合するグリカンに関する式である。図４０Ｂから４０Ｆはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４０Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４０Ｇは第ＶＩＩＩペプチドのＮ−結合グリコシル化部位（ＡおよびＡ'）およびＯ−結合部位（Ｂ）に結合するグリカンに関する式である。図４０Ｈから４０Ｍはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４０Ｇ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４１Ａから４１Ｍからなる図４１は、ウロキナーゼのグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４１Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すウロキナーゼペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４１Ｂから４１Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４１Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４１Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すウロキナーゼペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４１Ｉから４１Ｍはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４１Ｈ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４２Ａから４２Ｋからなる図４２は、ヒトＤＮａｓｅ（ｈＤＮａｓｅ）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４２Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すヒトＤＮａｓｅペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４２Ｂから４２Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４２Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４２Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すヒトＤＮａｓｅペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４２Ｉから４２Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４２Ｈ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４３Ａから４３Ｌからなる図４３は、インスリンのグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４３ＡはＮグリコシル化部位を含むように突然変異させたインスリンペプチドおよびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４３Ｂから４３Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４３Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４３Ｅは改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すインスリン−ムチン融合ペプチド、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４３Ｆから４３Ｈはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４３Ｅ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４３Ｉは改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すインスリン−ムチン融合ペプチドおよびインスリンペプチド、およびグリカンの式を表す図解である。図４３Ｊから４３Ｌはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４３Ｉ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４４Ａから４４Ｋからなる図４４は、Ｂ型肝炎表面タンパク質のＭ抗原（ｐｒｅＳおよびＳ）（ＨｂｓＡｇ）のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４４Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＭ−抗原ペプチドおよびグリカンの式を表す図解である。図４４Ｂから４４Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４４Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４４Ｈは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＭ−抗原ペプチドおよびグリカンの式を表す図解である。図４４Ｉから４４Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４４Ｈ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４５Ａから４５Ｋからなる図４５は、Ｎ、Ｖおよびそれらの変異体を含むヒト成長ホルモンのグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４５Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すヒト成長ホルモンペプチドおよびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４５Ｂから４５Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４５Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図４５Ｅはヒト成長ホルモンペプチドおよびムチンペプチドの一部および全部を含んでなる３つの融合ペプチドを表し、そして改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示し、およびそれに結合する例示グリカンの式（１つまたは複数）を表す図解である。図４５Ｆから４５Ｋはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４５Ｅ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４６Ａから４６Ｇからなる図４６は、ＴＮＦ−受容体−ＩｇＧ領域融合タンパク質（Ｅｎｂｒｅｌ（商標））のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４６Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すさらなるＮ−グリコシル化部位を含むように突然変異させることができるＴＮＦ−受容体−ＩｇＧＦｃ領域融合ペプチドを表す図解である。ＴＮＦ受容体ペプチドは太線で示し、そしてＩｇＧＦｃ領域は実線で示す。図４６Ｂから４６Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４６Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４７は、抗−ＨＥＲ２モノクローナル抗体（Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（商標））のグリカン構造を改造するための例示スキームを提供する。図４７Ａは改造を企図するグリカンに結合する抗体重鎖上の残基（１つまたは複数）を示すＮ−グリコシル化部位（１つまたは複数）を含むように突然変異させた抗−ＨＥＲ２モノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンを表す図解である。図４７Ｂから４７Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４７Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４８Ａから４８Ｄからなる図４８は、呼吸合胞体ウイルスのプロテインＦに対するモノクローナル抗体（Ｓｙｎａｇｉｓ（商標））上のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４８Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すＮ−グリコシル化部位（１つまたは複数）を含むように突然変異させるプロテインＦペプチドに対するモノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４８Ｂから４８Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４８Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図４９Ａから４９Ｄからなる図４９は、ＴＮＦ−αに対するモノクローナル抗体（Ｒｅｍｉｃａｄｅ（商標））上のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図４９Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＮ−グリコシル化部位（１つまたは複数）を含むように突然変異させたＴＮＦ−αに対するモノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図４９Ｂから４９Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき、企図する図４９Ａ中のペプチドの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図５０Ａから５０Ｄからなる図５０は、糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａに対するモノクローナル抗体（Ｒｅｏｐｒｏ（商標））上のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図５０Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すＮ−グリコシル化部位（１つまたは複数）を含むように突然変異させた糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａに対する突然変異モノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図５０Ｂから５０Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき企図する改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図５０Ｅは、改造を企図するグリカンに結合する残基を示す糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ−ムチン融合ペプチドに対するモノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図５０Ｆから５０Ｈはペプチドが発現される細胞の型に基づき企図する改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図５０Ｉは、改造を意図するグリカンに結合する残基を含む糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａ−ムチン融合ペプチドに対するモノクローナル抗体および糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａペプチドに対するモノクローナル抗体、およびそれらに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図５０Ｊから５０Ｌはペプチドが発現される細胞の型に基づき企図する改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図５１Ａから５１Ｄからなる図５１は、ＣＤ２０に対するモノクローナル抗体（Ｒｉｔｕｘａｎ（商標））上のグリカン構造を改造するための例示スキームを説明する。図５１Ａは改造を企図するグリカンに結合する残基を示すＮ−グリコシル化部位（１つまたは複数）を含むように突然変異させたＣＤ２０に対するモノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図５１Ｂから５１Ｄはペプチドが発現される細胞の型に基づき企図する図５１Ａ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。図５１Ｅは、改造を企図するグリカンに結合する残基（１つまたは複数）を示すＮ−グリコシル化部位（１つまたは複数）を含むように突然変異させたＣＤ２０に対するモノクローナル抗体、およびそれに結合する例示グリカンの式を表す図解である。図５１Ｆから５１Ｇはペプチドが発現される細胞の型に基づき企図する図５１Ｅ中のペプチドのグリカンの改造工程、および望ましい改造グリカン構造の図解である。 図５２Ａおよび５２Ｂからなる図５２は、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号１および２）。 図５３Ａおよび５３Ｂからなる図５３は、インターフェロンアルファ（ＩＦＮ−アルファ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号３および４）。 図５４Ａおよび５４Ｂからなる図５４は、インターフェロンベータ（ＩＦＮ−ベータ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号５および６）。 図５５Ａおよび５５Ｂからなる図５５は、第ＶＩＩａ因子の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号７および８）。 図５６Ａおよび５６Ｂからなる図５６は、第ＩＸ因子の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号９および１０）。 図５７Ａから５７Ｄからなる図５７は、濾胞刺激ホルモン（ＦＳＨ）のアルファおよびベーター鎖の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号１１から１４）。 図５８Ａおよび５８Ｂからなる図５８は、エリトロポエチン（ＥＰＯ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号１５および１６）。 図５９Ａおよび５９Ｂからなる図５９は、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号１７および１８）。 図６０Ａおよび６０Ｂからなる図６０は、インターフェロンガンマ（ＩＦＮ−ガンマ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号１９および２０）。 図６１Ａおよび６１Ｂからなる図６１は、α−１−プロテアーゼインヒビター（Ａ−１−ＰＩ、またはα−アンチトリプシン）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号２１および２２）。 図６２Ａ−１から６２Ａ−２および６２Ｂおよびからなる図６２は、グルコセレブロシダーゼの例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号２３および２４）。 図６３Ａおよび６３Ｂからなる図６３は、組織プラスミノーゲンアクチベーター（ＴＰＡ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号２５および２６）。 図６４Ａおよび６４Ｂからなる図６４は、インターロイキン−２（ＩＬ−２）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号２７および２８）。 図６５Ａ−１から６５Ａ−４および６５Ｂ−１から６５Ｂ−４からなる図６５は、第ＶＩＩＩ因子の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号２９および３０）。 図６６Ａおよび６６Ｂからなる図６６は、ウロキナーゼの例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号３３および３４）。 図６７Ａおよび６７Ｂからなる図６７は、ヒト組換えＤＮａｓｅ（ｈｒＤＮａｓｅ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号３９および４０）。 図６８Ａおよび６８Ｂからなる図６８は、糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａに対するヒト化モノクローナル抗体の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号４３および４４）。 図６９Ａおよび６９Ｂからなる図６９は、Ｂ型肝炎ウイルスに由来するＳ−タンパク質（ＨｂｓＡｇ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号４５および４６）。 図７０Ａおよび７０Ｂからなる図７０は、ヒト成長ホルモン（ＨＧＨ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号４７および４８）。 図７１Ａおよび７１Ｂからなる図７１は、Ｅｎｂｒｅｌ（商標）（腫瘍壊死因子受容体（ＴＮＦ−Ｒ）／ＩｇＧ融合）の一部を含んでなる７５ｋＤａの腫瘍壊死因子受容体（ＴＮＦ−Ｒ）の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号３１および３２）。 図７２Ａおよび７２Ｂからなる図７２は、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ（商標）（Ｈｅｒ−２、ヒト上皮増殖因子受容体に対するモノクローナル抗体（ＭＡｂ））のそれぞれ軽および重鎖の例示アミノ酸配列である（それぞれ配列番号３５および３６）。 図７３Ａおよび７３Ｂからなる図７３は、Ｓｙｎａｇｉｓ（商標）（呼吸合胞対ウイルスのＦペプチドに対するＭＡｂ）のそれぞれ重および軽鎖の例示アミノ酸配列である（それぞれ配列番号３７および３８）。 図７４Ａおよび７４Ｂからなる図７４は、Ｒｅｍｉｃａｄｅ（商標）（ＴＮＦαに対するＭＡｂ）の非−ヒト可変領域の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号４１および４２）。 図７５Ａおよび７５Ｂからなる図７５は、ヒトＩｇＧのＦｃ部分の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号４９および５０）。 図７６は、抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａマウス抗体の成熟可変領域軽鎖の例示アミノ酸配列である（配列番号５２）。 図７７は、抗−糖タンパク質ＩＩｂ／ＩＩＩａマウス抗体の成熟可変領域重鎖の例示アミノ酸配列である（配列番号５４）。 図７８は、ヒトＩｇＧの可変領域軽鎖の例示アミノ酸配列である（配列番号５１）。 図７９は、ヒトＩｇＧの可変領域重鎖の例示アミノ酸配列である（配列番号５３）。 図８０は、ヒトＩｇＧの軽鎖の例示アミノ酸配列である（配列番号５５）。 図８１は、ヒトＩｇＧの重鎖の例示アミノ酸配列である（配列番号５６）。 図８２Ａおよび図８２Ｂからなる図８２は、抗−ＣＤ２０マウス抗体の軽鎖の成熟可変領域軽鎖の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号５９および６０）。 図８３Ａおよび図８３Ｂからなる図８３は、抗−ＣＤ２０マウス抗体の重鎖の成熟可変領域の例示ヌクレオチドおよび対応するアミノ酸配列である（それぞれ配列番号６１および６２）。 図８４Ａから図８４Ｅからなる図８４は、タンデムキメラ抗体発現ベクターＴＣＡＥ８のヌクレオチド配列である（配列番号５７）。 図８５Ａから図８５Ｅからなる図８５は、抗−ＣＤ２０マウス抗体の軽および重可変ドメインを含むタンデムキメラ抗体発現ベクターＴＣＡＥ８のヌクレオチド配列である（配列番号５８）。 図８６はＴＰ１０のシアリル化前後のＦＡＣＥ分析の結果の表すアクリルアミドゲルの像である。ＢｉＮＡ_０種はシアル酸残基が無い。ＢｉＮＡ_１種は１つのシアル酸残基を有する。ＢｉＮＡ_２種は２つのシアル酸残基を有する。Ｂｉ＝２アンテナ；ＮＡ＝ノイラミン酸。 図８７はラットに注射したシアル化前後のＴＰ１０の経時的な血漿濃度をμｇ／ｍｌで表すグラフである。 図８８はシアル化前後のＴＰ１０について、血漿濃度−時間曲線（ＡＵＣ）下の面積をμｇ／時間／ｍｌで表すグラフである。 図８９はＴＰ１０のフコシル化前後のＦＡＣＥ分析の結果の表すアクリルアミドゲルの像である。ＢｉＮＡ_２Ｆ_２種は２つのノイラミン（ＮＡ）酸残基および２つのフコース残基（Ｆ）を有する。 図９０はインビトロ（菱形）およびＬｅｃ１１ ＣＨＯ細胞（四角）内のインビボでグリコシル化されたＴＰ２０（ｓＣＲ１ｓＬｅ^ｘ）のインビトロ結合を表すグラフである。 図９１はＥＰＯのＧｌｃＮＡｃ−化に由来するグリコフォームの２−ＡＡ ＨＰＬＣによる分析を表すグラフである。 図９２Ａおよび９２Ｂからなる図９２は、ＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトル（図９２Ａ）およびＮ−グリカナーゼによりＲＮａｓｅＢから開裂されたオリゴ糖のＨＰＬＣプロフィール（図９２Ｂ）を表す２つのグラフである。ペプチドのＮ−グリコシル化部位の大部分が、５〜９個のマンノース残基からなるマンノースオリゴ糖で修飾される。 図９３は高マンノースＮ−グリカンのハイブリッドＮ−グリカンへの転換を表すスキームである。酵素１は、トリコダーマ レーゼイ（Ｔｒｉｃｏｄｏｍａ ｒｅ ｅｓｅｉ）またはスルペルギルス サイトイ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓａｉｔｏｉ）に由来するα１，２−マンノシダーゼである。酵素２は、ＧｎＴ−Ｉ（β−１，２−Ｎ−アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩ）である。酵素３はＧａｌＴ−Ｉ（β１，４−ガラクトシルトランスフェラーゼＩ）である。酵素４はα２，３−シアリルトランスフェラーゼまたはα２，６−シアリルトランスフェラーゼである。 図９４Ａおよび９４Ｂからなる図９４は、組換えＴ．（レーゼイ）ｒｅｅ ｓｅｉのα１，２−マンノシダーゼで処理したＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトル（図９４Ａ）および修飾ＲＮａｓｅＢからＮ−グリカナーゼにより開裂されたオリゴ糖のＨＰＬＣプロフィール（図９４Ｂ）を表す２つのグラフである。 図９５はＡ．サイトイ（ｓａｉｔｏｉ）から精製された市販されているα１，２−マンノシダーゼ（グリコ＆カルビオケム：Ｇｌｙｋｏ ＆ ＣａｌｂｉｏＣｈｅｍ）で処理したＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルを表すグラフである。 図９６は組換えＧｎＴ−Ｉ（ＧｌｃＮＡｃ−トランスフェラーゼＩ）で図９４に示した生成物を処理することにより修飾したＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルを表すグラフである。 図９７は組換えＧｎＴ１（ガラクトシルトランスフェラーゼ１）で図９６に示した生成物を処理することにより修飾したＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルを表すグラフである。 図９８はトランスフェラーゼの供与体としてＣＭＰ−ＳＡを使用して、組換えＳＴ３ＧａｌＩＩＩ（α２，３−シアリルトランスフェラーゼＩＩＩ）で図９７に示した生成物を処理することにより修飾したＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルを表すグラフである。 図９９はトランスフェラーゼの供与体としてＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）を使用して、組換えＳＴ３ＧａｌＩＩＩ（α２，３−シアリルトランスフェラーゼＩＩＩ）で図９７に示した生成物を処理することにより修飾したＲＮａｓｅＢのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルを表すグラフである。 図１００は高マンノースＮ−グリカンの複雑なＮ−グリカンへの転換を表すスキームである。酵素１は、トリコダーマ レーゼイ（Ｔｒｉｃｏｄｏｍａ ｒｅｅ ｓｅｉ）またはスルペルギルス サイトイ（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓａｉｔｏｉ）に由来するα１，２−マンノシダーゼである。酵素２は、ＧｎＴ−Ｉである。酵素３はＧａｌＴ１である。酵素４はα２，３−シアリルトランスフェラーゼまたはα２，６−シアリルトランスフェラーゼである。酵素５はα−マンノシダーゼＩＩである。酵素６はα−マンノシダーゼである。酵素７はＧｎ−ＩＩである。酵素８はα１，６−マンノシダーゼである。酵素９はα１，３−マンノシダーゼである。 図１０１は、Ｎ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼＩにより触媒されるＶＩ（ＧｎＴ Ｉ−ＶＩ）への連結の図解である。Ｒ＝ＧｌｃＮＡｃβ１，４ＧｌｃＮＡｃ−Ａｓｎ−Ｘ。 図１０２Ａおよび１０２Ｂからなる図１０２は、Ｎ−アセチルグルコサミンが付加されたＥＰＯの２つのロットに関する２−ＡＡ ＨＰＬＣ分析を表すグラフである。図１０２ＡはロットＡの分析を表し、そして図１０２ＢはロットＢの分析を表す。 図１０３はＧｎＴ−ＶでＥＰＯに第３グリカン枝を導入する反応の生成物の２−ＡＡ ＨＰＬＣ分析を表すグラフである。 図１０４は適当な供与基を用いて、ＧｎＴ−Ｉ、ＧｎＴ−ＩＩ、ＧｎＴ−ＩＩＩ、ＧｎＴ−ＩＶおよびＧａｌＴ１で処理した後のＥＰＯ調製物のグリカンのＭＡＬＤＩ−ＴＯＦスペクトルを表すグラフである。 図１０５はヒト下垂体ＦＳＨの脱シアリル化反応の生成物を表す等電点電気泳動（ＩＥＦ）ゲルの像である。レーン１および４は等電点電気泳動（ＩＥＦ）の標準である。レーン２は天然の（ｎａｔｉｖｅ）ＦＳＨである。レーン３は脱シアリル化ＦＳＨである。 図１０６はｒＦＳＨのＰＥＧ−シアリル化を作成するための反応の生成物のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である。レーン１および８は、ＳｅｅＢｌｕｅ＋２分子量標準である。レーン２は１５μｇの天然のＦＳＨである。レーン３は１５μｇのアシアロ−ＦＳＨ（ＡＳ−ＦＳＨ）である。レーン４はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡの１５μｇの反応生成物である。レーン５はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）の１５μｇの反応生成物である。レーン６はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（５ｋＤａ）の１５μｇの反応生成物である。レーン７はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）の１５μｇの反応生成物である。 図１０７はＦＳＨのＰＥＧ−シアリル化を作成するための反応の生成物の等電点電気泳動ゲルの像である。レーン１および８はＩＥＦ標準である。レーン２は１５μｇの非変性ＦＳＨである。レーン３は１５μｇのアシアロ−ＦＳＨ（ＡＳ−ＦＳＨ）である。レーン４はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡの１５μｇの反応生成物である。レーン５はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）の１５μｇの反応生成物である。レーン６はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（５ｋＤａ）の１５μｇの反応生成物である。レーン７はＡＳ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）の１５μｇの反応生成物である。 図１０８はヒト下垂体細胞で生産される非変性非−組換えＦＳＨのＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である。レーン１、２および５はＳｅｅＢｌｕｅ（商標）＋２分子量標準である。レーン３および４はそれぞれ５μｇおよび２５μｇの天然のＦＳＨである。 図１０９はｒＦＳＨのアシアリル化反応の生成物を表す等電点電気泳動ゲル（ｐＨ３−７）の像である。レーン１および４はＩＥＦ標準である。レーン２は天然のｒＦＳＨである。レーン３はアシアロ−ｒＦＳＨである。 図１１０はアシアロ−ｒＦＳＨのＰＥＧ−シアリル化の結果を表すＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である。レーン１は非変性ｒＦＳＨである。レーン２はアシアロ−ＦＳＨである。レーン３はアシアロ−ＦＳＨと０．５ｍＭのＣＭＰ−ＳＡの反応生成物である。レーン４〜７はアシアロ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）との間のそれぞれ２時間、５時間、２４時間および４８時間の反応生成物である。レーン８は、アシアロ−ＦＳＨと１．０ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）との間の４８時間の反応生成物である。レーン９はアシアロ−ＦＳＨと１．０ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）との間の４８時間の反応生成物である。 図１１１はアシアロ−ｒＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）のＰＥＧ−シアリル化の生成物を示す等電点電気泳動ゲルの像である。レーン１は非変性ｒＦＳＨである。レーン２はアシアロ−ｒＦＳＨである。レーン３はアシアロ−ＦＳＨとＣＭＰ−ＳＡとの２４時間の反応生成物である。レーン４〜７はアシアロ−ｒＦＳＨと０．５ｍＭ ＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）のそれぞれ２時間、５時間、２４時間および４８時間の反応生成物である。レーン８はブランクである。レーン９および１０は、アシアロ−ｒＦＳＨとそれぞれ０．５ｍＭおよび１．０ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）の４８時間の反応生成物である。 図１１２はｒＦＳＨおよびｒＦＳＨ−ＡＳ−ＰＥＧ（１ＫＤａおよび１０ＫＤａ）の薬物動態学のグラフである。このグラフはグリコＰＥＧ化ｒＦＳＨについて、非−ＰＥＧ化ｒＦＳＨに比べて、ラットの血流中にあるｒＦＳＨ化合物の時間と血流中のｒＦＳＨ化合物の平均濃度との間の関係を具体的に説明する。 Ｓｅｒｔｏｌｉ細胞を使用したＦＳＨバイオアッセイの結果のグラフである。このグラフはインキューベーション培地中のＳｅｒｔｏｌｉ細胞中のＦＳＨ濃度とＳｅｒｔｏｌｉ細胞から放出された１７−βエストラジオールの量との間の関係を具体的に説明する。 図１１４はＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である：標準（レーン１）；天然のトランスフェリン（レーン２）；アシアロトランスフェリン（レーン３）；アシアロトランスフェリンおよびＣＭＰ−ＳＡ（レーン４）；レーン５および６、アシアロトランスフェリンおよびそれぞれ０．５ｍＭおよび５ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ＫＤａ）；レーン７および８、アシアロトランスフェリンおよびそれぞれ０．５ｍＭおよび５ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（５ＫＤａ）；レーン９および１０、アシアロトランスフェリンおよびそれぞれ０．５ｍＭおよび５ｍＭのＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）。 図１１５はＩＥＦゲルの像である：天然のトランスフェリン（レーン１）；アシアロトランスフェリン（レーン２）；アシアロトランスフェリンおよびＣＭＰ−ＳＡ、２４時間（レーン３）；アシアロトランスフェリンおよびＣＭＰ−ＳＡ、９６時間（レーン４）レーン５および６、それぞれ２４時間および９６時間のアシアロトランスフェリンおよびＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）；レーン７および８、それぞれ２４時間および９６時間のアシアロトランスフェリンおよびＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（５ＫＤａ）；レーン９および１０、それぞれ２４時間および９６時間のアシアロトランスフェリンおよびＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）。 図１１６はアシアロ−第ＶＩＩａ因子の等電点電気泳動ゲル（ｐＨ３−７）の像である。レーン１は第ｒＶＩＩａ因子；レーン２〜５はアシアロ−第ＶＩＩａ因子である。 図１１７は第ＶＩＩａ因子のＭＡＬＤＩスペクトルのグラフである。 図１１８は第ＶＩＩａ因子−ＰＥＧ（１ｋＤａ）のＭＡＬＤＩスペクトルのグラフである。 図１１９は第ＶＩＩａ因子−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）のＭＡＬＤＩスペクトルのグラフである。 図１２０はＰＥＧ化第ＶＩＩａ因子のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である：レーン１はアシアロ−第ＶＩＩａ因子である。レーン２はＳＴ３Ｇａｌ３を用いた４８時間後のアシアロ−第ＶＩＩａ因子とＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）との反応の生成物である。レーン３はＳＴ３Ｇａｌ３を用いた４８時間後のアシアロ−第ＶＩＩａ因子とＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）との反応の生成物である。レーン４はＳＴ３Ｇａｌ３を用いた９６時間のアシアロ−第ＶＩＩａ因子とＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）との反応の生成物である。 図１２１は脱シアリル化手順の生成物のｐＩを表すＩＥＦゲルの像である。レーン１および５はＩＥＦ標準である。レーン２は第ＩＸ因子タンパク質である。レーン３はｒ第ＩＸタンパク質である。レーン４はｒ第ＩＸタンパク質の２０時間の脱シアリル化反応である。 図１２２は、ＣＭＰ−ＳＡ−ＰＥＧとの反応後、ＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）またはＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）のいずれかと結合した第ＩＸ因子の分子量を表すＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である。レーン１および６は、ＳｅｅＢｌｕｅ＋２分子量標準である。レーン２はｒＦ−ＩＸである。レーン３は脱シアリル化ｒＦ−ＩＸである。レーン４はＳＡ−ＰＥＧ（１ｋＤａ）に結合したｒ第ＩＸ因子である。レーン５はＳＡ−ＰＥＧ（１０ｋＤａ）に結合したｒ第ＩＸ因子である。 図１２３は、第ＩＸ因子の直接−シアリル化および第ＩＸ因子−ＳＡ−ＰＥＧのシアル酸キャッピングの反応生成物を表すＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である。レーン１はタンパク質標準であり、レーン２はブランクであり；レーン３はｒ第ＩＸ因子であり；レーン４はＳＡキャップ化ｒ第ＩＸ因子−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）であり；レーン５はｒ第ＩＸ因子−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）であり；レーン６はＳＴ３Ｇａｌ１であり；レーン７はＳＴ３Ｇａｌ３であり；レーン８、９、１０は事前のシアリダーゼ処理無しのｒ第ＩＸ因子−ＳＡ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）である。 図１２４は非変性ＥＰＯのグリカンのＭＡＬＤＩスペクトルを表すグラフである。 図１２５はＣＭＰ−ＮＡＮ−ＰＥＧ（１ＫＤａ）およびＣＭＰ−ＮＡＮ−ＰＥＧ（１０ＫＤａ）を使用したＰＥＧ化の生成物のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの像である。 図１２６はＰＥＧ化ＥＰＯのインビトロバイオアッセイの結果を表すグラフである。菱形はＰＥＧ分子を持たないシアリル化ＥＰＯからのデータを表す。四角はＰＥＧ（１ＫＤａ）を持つＥＰＯを使用して得たデータを表す。三角はＰＥＧ（１０ＫＤａ）を持つＥＰＯを使用して得たデータを表す。

【配列表】

Claims (77)

1. ペプチドに共有結合しているグリコ結合分子を有する、一つまたはそれ以上のグリカンを含むＥＰＯペプチド。
2. 前記一つまたはそれ以上のグリカンがモノ触角のグリカンである請求項１記載のＥＰＯペプチド。
3. 前記一つまたはそれ以上のグリカンがビ触角のグリカンである請求項１記載のＥＰＯペプチド。
4. 前記一つまたはそれ以上のグリカンがトリ触角のグリカンである請求項１記載のＥＰＯペプチド。
5. 前記一つまたはそれ以上のグリカンが少なくともトリ触角のグリカンである請求項１記載のＥＰＯペプチド。
6. 前記一つまたはそれ以上のグリカンが、モノもしくは多触角のグリカンの混合物を含む、少なくとも二つののグリカンからなる請求項１記載のＥＰＯペプチド。
7. 前記一つまたはそれ以上のグリカンが、Ｎ連結グリカンおよびＯ連結グリカンから選ばれるものである請求項１記載のＥＰＯペプチド。
8. 前記一つまたはそれ以上のグリカンが、Ｎ連結グリカンおよびＯ連結グリカンから選ばれる、少なくとも二つののグリカンからなる請求項１記載のＥＰＯペプチド。
9. 前記ペプチドが、原核細胞および真核細胞から構成される群から選ばれる細胞中で発現されるものである請求項１記載のＥＰＯペプチド。
10. 前記真核細胞が、哺乳動物の細胞、昆虫の細胞および真菌細胞から構成される群から選ばれるものである請求項９記載のＥＰＯペプチド。
11. 前記真菌細胞が酵母細胞である請求項１０記載のＥＰＯペプチド。
12. ＥＰＯペプチド、少なくとも一つのグリカンおよび少なくとも一つの該グリカンに共有結合したポリ（エチレングリコール）分子、ここで該ポリ（エチレングリコール）分子がグリコシルトランスフェラーゼを用いて該ＥＰＯペプチドに加えられる、を含むグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
13. 少なくとも一つのモノ触角のグリカンを含んでなる請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
14. すべての前記グリカンがＮ連結でモノ触角である請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
15. すべての前記グリカンが、Ｎ連結で、前記ポリ（エチレングリコール）を含む前記グリカンの少なくとも一つである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
16. 前記グリカンの一つ以上が前記ポリ（エチレングリコール）を含むものである請求項１５記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
17. すべての前記グリカンがＮ連結であり、すべての前記グリカンが前記ポリ（エチレングリコール）を含むものである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
18. 少なくとも三つのモノ触角グリカンがこれらに共有結合しているポリ（エチレングリコール）を含むものである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
19. ＥＰＯペプチドが三つまたはそれ以上のグリカンからなるグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
20. 少なくとも前記グリカンの一つがこれらに共有結合した前記ポリ（エチレングリコール）を含んでなる請求項１９記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
21. 前記グリカンの一つ以上がこれらに共有結合した前記ポリ（エチレングリコール）を含んでなる請求項１８記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
22. 前記グリカンのすべてがこれらに共有結合した前記ポリ（エチレングリコール）を含んでなる請求項１８記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
23. 前記ポリ（エチレングリコール）が、フコース（Ｆｕｃ）、Ｎ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）、ガラクトース（Ｇａｌ）およびシアル酸（ＳＡ）からなる群から選択される糖部分の少なくとも一つに連結している請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
24. 前記シアル酸がＮ−アセチルノイラミン酸である請求項２３記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
25. 前記ＥＰＯペプチドがＯ連結グリカンを含まないものである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
26. 前記ＥＰＯペプチドが少なくとも一つのＯ連結グリカンを含むものである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
27. 前記Ｏ連結ペプチドがこれらに共有結合しているポリ（エチレングリコール）を含んでなる請求項２６記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
28. 前記ＥＰＯペプチドが細胞内で組み替え的に発現されているものである請求項２７記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
29. 前記細胞が、昆虫の細胞、真菌細胞、および哺乳動物の細胞から構成される群から選ばれるものである請求項２８記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
30. 前記真菌細胞が酵母細胞である請求項２９記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
31. 前記細胞が昆虫の細胞である請求項２９記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
32. 前記細胞が酵母細胞である請求項２９記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
33. 前記細胞が哺乳動物の細胞である請求項２９記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
34. 前記哺乳動物の細胞がＣＨＯ細胞である請求項３３記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
35. 前記ポリ（エチレングリコール）が約１ｋＤａ，２ｋＤａ，５ｋＤａ，１０ｋＤａ，２０ｋＤａ，３０ｋＤａ，および４０ｋＤａからなる群から選択される分子量を有するものである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
36. 前記ポリ（エチレングリコール）が２０ｋＤａの分子量を有するものである請求項３５記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
37. 前記ＥＰＯペプチドが天然産のＥＰＯペプチドおよび変異ＥＰＯペプチドからなる群から選択されるものである請求項１２記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
38. 前記変異ＥＰＯペプチドが、Ａｒｇ^１３９からＡｌａ^１３９、Ａｒｇ^１４３からＡｌａ^１４３、およびＬｙｓ^１５４からＡｌａ^１５４からなる群から選択される少なくとも一つの変異を有するＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７３のアミノ酸列を含むものである請求項３７記載のグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
39. （ａ）ＥＰＯペプチドをポリ（エチレングリコール）に共有結合した糖ヌクレオチドとグリコシルトランスフェラーゼの混合物に、該ポリ（エチレングリコール）を該ＥＰＯペプチドに転移するのに十分な条件下で接触させる、
    段階を含む、グリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチドを造る方法。
40. 糖ヌクレオチドの糖が、フコース（Ｆｕｃ）、Ｎ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）、ガラクトース（Ｇａｌ）およびシアル酸（ＳＡ）からなる群から選択されるものである請求項３９の方法。
41. 前記シアル酸がＮ−アセチルノイラミン酸（ＮＡＮ）である請求項４０記載の方法。
42. 前記ポリ（エチレングリコール）が約１ｋＤａ，２ｋＤａ，５ｋＤａ，１０ｋＤａ，２０ｋＤａ，３０ｋＤａ，および４０ｋＤａからなる群から選択される分子量を有するものである請求項３９記載の方法。
43. 前記ポリ（エチレングリコール）が２０ｋＤａの分子量を有するものである請求項４２記載の方法。
44. 前記ＥＰＯペプチドが細胞内で組み替え的に発現されているものである請求項３９記載の方法。
45. 前記細胞が、昆虫の細胞、真菌細胞、および哺乳動物の細胞から構成される群から選ばれるものである請求項４４記載の方法。
46. 前記細胞が昆虫の細胞である請求項４５記載の方法。
47. 前記細胞が酵母細胞である請求項４５記載の方法。
48. 前記細胞が哺乳動物の細胞である請求項４５記載の方法。
49. 前記哺乳動物の細胞がＣＨＯ細胞である請求項４５記載の方法。
50. 前記ＥＰＯペプチドが天然産のＥＰＯペプチドおよび変異ＥＰＯペプチドから構成される群から選択されるものである請求項３９記載の方法。
51. 前記変異ＥＰＯペプチドが、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７３の列を有するものである請求項５０記載の方法。
52. 前記変異ＥＰＯペプチドが、Ａｒｇ^１３９からＡｌａ^１３９、Ａｒｇ^１４３からＡｌａ^１４３、およびＬｙｓ^１５４からＡｌａ^１５４からなる群から選択される少なくとも一つの変異を有するＳＥＱＩＤＮＯ：７３のアミノ酸列を含むものである請求項５０記載の方法。
53. 段階（ａ）の前に、（ｂ）前記ＥＰＯペプチドを、該ＧｌｃＮＡｃと該ＥＰＯの間の結合を形成するのに十分な条件下でヌクレオチド−ＧｌｃＮＡｃが基質である、ヌクレオチドーＮ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）分子およびＮ−アセチルグルコサミントランスフェラーゼ（ＧｎＴ）、ここで該ＧｎＴがＧｎＴＩ，ＧｎＴＩＩ，ＧｎＴＩＩＩ，ＧｎＴＩＶ，ＧｎＴＶ，およびＧｎＴＶＩからなる群から選択される、からなる混合物と接触させる請求項３９の方法。
54. 前記混合物がＧｎＴＩ，ＧｎＴＩＩ，ＧｎＴＩＩＩ，ＧｎＴＩＶ，ＧｎＴＶ，およびＧｎＴＶＩからなる群から選択される一つのＧｎＴを含むものである請求項５３の方法。
55. 前記ＧｎＴが、ＧｎＴＩである請求項５４の方法。
56. 前記ＧｎＴが、ＧｎＴＩＩである請求項５４の方法。
57. 前記グリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチドが少なくとも一つのモノ触角グリカンを含む請求項３９記載の方法。
58. 前記糖ヌクレオチドの糖がガラクトースであり、前記グリコシルトランスフェラーゼがガラクトシルトランスフェラーゼ（ＧａｌＴＩ）である請求項３９記載の方法。
59. 段階（ａ）の前で、しかし段階（ｂ）の後で、（ｃ）前記ＥＰＯペプチドを、ガラクトース（Ｇａｌ）ヌクレオチドとガラクトシルトランスフェラーゼＩ（ＧａｌＴＩ）との混合物に、ガラクトースを該ＥＰＯペプチドに転移するに十分な条件下で、接触させる請求項５３記載の方法。
60. 段階（ａ）において、前記糖ヌクレオチドの糖がシアル酸であり、前記グリコシルトランスフェラーゼがシアリルトランスフェラーゼである請求項３９記載の方法。
61. 前記シアル酸がＮ−アセチルノイラミン酸（ＮＡＮ）である請求項６０記載の方法。
62. 前記シアリルトランスフェラーゼがα（２，３）シアリルトランスフェラーゼ、α（２，６）シアリルトランスフェラーゼおよび（２，８）シアリルトランスフェラーゼから構成される群から選択される請求項６０に記載の方法。
63. 請求項３９の方法により造られるグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
64. ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７３の列であるグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
65. ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７３の列を含み、さらに該列において変異を含むグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
66. （ａ）ＥＰＯペプチドを、ポリ（エチレングリコール）に共有結合した糖ヌクレオチドとフコシルトランスフェラーゼであるグリコシルトランスフェラーゼの混合物に、該ポリ（エチレングリコール）を該ＥＰＯペプチドに転移するのに十分な条件下で接触させる、
    段階を含む、グリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチドを造る方法。
67. 前記フコシルトランスフェラーゼがフコシルトランスフェラーゼＩ、フコシルトランスフェラーゼＩＩＩ、フコシルトランスフェラーゼＩＶ、フコシルトランスフェラーゼＶ、フコシルトランスフェラーゼＶＩ、フコシルトランスフェラーゼＶＩＩからなる群から選択される請求項６６記載の方法。
68. 請求項６６の方法により造られるグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチド。
69. 前記ＥＰＯペプチドがＣＨＯ細胞中で発現される請求項６６記載の方法。
70. 哺乳動物に、ペプチドについたグリコ共有結合分子をもつ一つまたはそれ以上のグリカンを有するＥＰＯペプチドを、投与することからなり、該哺乳動物においてヘマトクリット濃度を増加するに有効な量で投与されるものである、
    貧血症をもつ哺乳動物を処置する方法。
71. 前記哺乳動物が人間である請求項７０記載の方法。
72. ＥＰＯと少なくとも一つのグリカンと少なくとも一つの該グリカンに共有結合しているポリ（エチレングリコール）分子を含むグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチドの有効量を投与することからなり、該ポリ（エチレングリコール）分子がグリコシルトランスフェラーゼを用いて該ＥＰＯペプチドに加えられ、該ＥＰＯペプチドが該哺乳動物においてヘマトクリット濃度を増加するに有効な量で投与されるものである、
    哺乳動物にエリスロポエチン治療を施す方法。
73. 前記哺乳動物が人間である請求項７２記載の方法。
74. 哺乳動物に、ＥＰＯペプチドと少なくとも一つのグリカンと少なくとも一つの該グリカンに共有結合しているポリ（エチレングリコール）分子を含むグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチドを投与することからなり、該ポリ（エチレングリコール）分子がグリコシルトランスフェラーゼを用いて該ＥＰＯペプチドに加えられ、該ＥＰＯペプチドが該哺乳動物においてヘマトクリット濃度を増加するに有効な量で投与されるものである、
    貧血症をもつ哺乳動物を処置する方法。
75. 前記哺乳動物が人間である請求項７４記載の方法。
76. 前記貧血症が化学療法に関連している請求項７５記載の方法。
77. 患者に、ＥＰＯペプチドと少なくとも一つのグリカンと少なくとも一つの該グリカンに共有結合しているポリ（エチレングリコール）分子を含むグリコＰＥＧ化ＥＰＯペプチドを投与することからなり、該ポリ（エチレングリコール）分子がグリコシルトランスフェラーゼを用いて該ＥＰＯペプチドに加えられ、該ＥＰＯペプチドが該患者においてヘマトクリット濃度を増加するに有効な量で投与されるものである、
    腎臓透析患者を治療する方法。
    
    
    
    
    

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