ES2097753T5 - Isoformas de eritropoietina. - Google Patents
Isoformas de eritropoietina.Info
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Abstract
SE EXPONEN LAS ISOFORMAS DE ERITROPOYETINA PROVISTAS DE UN NUMERO ESPECIFICO DE ACIDOS SIALICOS POR MOLECULA DE ERITROPOYETINA. TAMBIEN SE EXPONEN LAS MEZCLAS DE DICHAS ISOFORMAS, COMPUESTOS FARMACEUTICOS QUE LAS CONTIENEN O MEZCLAS DE LAS MISMAS Y METODOS PARA OBTENERLAS.
Description
Isoformas de eritropoietina.
La presente solicitud es en parte continuación de
la solicitud US 421,444 presentada el 13 Octubre 1989, que se
incorpora a modo de referencia. La presente invención se refiere a
isoformas de eritropoietina o mezclas de las mismas, a los métodos
para la preparación de isoformas específicas o mezclas de las
mismas, a composiciones farmacéuticas que comprenden dichas
isoformas o mezclas de las mismas, y a métodos de tratamiento que
utilizan dichas isoformas y composiciones.
La eritropoietina es una hormona de glucoproteína
que interviene en la maduración de células progenitoras eritroides
en eritrocitos. Es esencial para regular los niveles de glóbulos
rojos en la circulación sanguínea. La eritropoietina natural es
producida por el hígado durante la vida fetal y por el riñón de los
adultos, y circula en la sangre, estimulando la producción de
glóbulos rojos en la médula ósea. La anemia es casi siempre
consecuencia de insuficiencia renal, debido a la disminución en la
producción de eritropoietina por el riñón. Se ha comprobado que la
eritropoietina recombinante producida por técnicas de ingeniería
genética con la expresión de un producto de proteína de una célula
anfitriona transformada con el gen de codificación de
eritropoietina, era eficaz cuando se utilizaba en el tratamiento de
la anemia resultante de la insuficiencia renal crónica.
Hasta hace muy poco, la disponibilidad de
eritropoietina era muy limitada. Si bien la proteína está presente
en la orina humana, los niveles excretados son demasiado reducidos
para que pueda utilizarse como fuente práctica de eritropoietina
para los usos terapéuticos. Los pacientes que presentan anemia
aplásica tienen niveles elevados de eritropoietina urinaria, si se
compara con personas sanas, si bien la pequeña cantidad de esta
orina también hace que no se pueda recurrir a esta fuente. La
purificación de la eritropoietina urinaria humana por Miyake et
al., en J. Biol. Chem. 252, 5558 (1977), utilizaba, como
material de partida, orina procedente de personas con anemia
aplásica.
La identificación, clonación y expresión de genes
que codifican la eritropoietina se describen en la patente US
4,703,008 de Lin. En la patente US 4,667,016 de Lai et al.,
se describe la purificación de eritropoietina recombinante a partir
de medio celular que apoyaba el crecimiento de células de mamífero
que contenían plasmidos de eritropoietina recombinante, por ejemplo.
La expresión y recuperación de eritropoietina recombinante,
biológicamente activa, de células anfitrionas de mamífero que
contienen el gen de la eritropoietina en plasmidos recombinantes ha
hecho, por primera vez que se disponga de cantidades de
eritropoietina suficientes para las aplicaciones terapéuticas.
Además, el conocimiento de la secuencia génica y la disponibilidad
de cantidades mayores de proteína purificada han contribuido a
entender mejor la forma en que actúa esta proteína.
La actividad biológica de una proteína depende de
su estructura. En particular, la estructura primaria de una
proteína (es decir su secuencia de amino ácidos) proporciona
información, que permite la formación de estructuras secundarias
(por ejemplo una hélice o una hoja \beta) y terciarias (pliegue
tridimensional global) por un polipéptido durante y después de su
síntesis. La destrucción de estructuras secundarias y terciarias
por la introducción de mutaciones o por tratamientos químicos o
enzimáticos puede tener como resultado una reducción de la
actividad biológica.
En los organismos procarióticos, las actividades
biológicas de las proteínas se rigen en gran medida por las
estructuras descritas anteriormente. A diferencia de las proteínas
de las células procarióticas, muchas proteínas de superficie y
secretoras de células producidas por células eucarióticas se
modifican con uno o más grupos de oligo sacáridos. Esta
modificación, que recibe el nombre de glicosilación, puede afectar
en gran medida las propiedades físicas de las proteínas y puede ser
también importante en la estabilidad de la proteína, la secreción y
la localización sub-celular. Una glicosilación
adecuada puede resultar esencial para la actividad biológica. De
hecho, algunos genes de organismos eucarióticos, cuando se expresan
en bacterias (p.e., E.coli) que carecen de procesos
celulares para la glicosilación de proteínas, producen proteínas
que presentan poca o ninguna actividad, debido a su falta de
glicosilación.
La glicosilación se produce en lugares
específicos del soporte del polipéptido y suele ser de dos tipos:
los oligosacáridos ligados a O se unen a residuos de serina o
treonina mientras que los oligo sacáridos ligados a N se unen a
residuos de asparagina cuando forman parte de la secuencia
Asn-X-Ser/Thr, donde X puede ser
cualquier amino ácido salvo la prolina. Las estructuras de los
oligosacáridos ligados a N y ligados a O y los residuos de azúcar
encontrados en cada tipo son diferentes. Un tipo de azúcar que se
suele encontrar en ambos es el ácido N-acetil
neuramínico (denominado en lo que sigue ácido siálico). El ácido
siálico suele ser el residuo terminal de los dos oligosacáridos
ligados a N y ligados a O y, debido a su carga negativa, puede
conferir propiedades ácidas a la glucoproteína.
Tanto la eritropoietina derivada de la orina
humana como la eritropoietina recombinante (expresada en células de
mamífero) que tiene la secuencia de amino ácidos
1-165 de la eritropoietina humana, contienen tres
cadenas de oligoacáridos ligados a N y uno ligado a O, que
comprenden juntos aproximadamente el 40% del peso molecular total
de la glucoproteína. La glicosilación ligada a N, se produce en
residuos de asparagina situados en las posiciones 24, 38 y 83
mientras que la glicosilación ligada a O se produce en un residuo
de serinas situado en la posición 126 (Lai et al., J. Biol.
Chem. 261 3116 (1986) Broudy et al., Arch. Biochem.
Biophys. 265 329 (1988)). Se ha visto que las cadenas de
oligosacáridos se modifican con residuos de ácido siálico
terminales. El tratamiento enzimático de la eritropoietina
glicosilada para quitar todos los residuos de ácido siálico tiene
como consecuencia una pérdida de la actividad in vivo pero
no afecta la actividad in vitro (Lowy et al., Nature
185, 102 (1960); Goldwasser et al., Biol. Chem.
249, 4202 (1974)). Este comportamiento se explica por la
rápida depuración de la asialo eritropoietina de la circulación tras
la interacción con la proteína que fija la asialo glucoproteína
hepática (Morrell et al., J. Biol. Chem. 243, 155
(1968); Brig., et al., Am. J. Physiol 227, 1385
(1974) Ashwell et al., Methods Enzymol. 50, 287
(1978)). Por consiguiente, la eritropoietina posee actividad
biológica in vivo únicamente si se ha "sialitado" para
evitar su fijación por la proteína de fijación hepática.
El papel de los demás componentes en las cadenas
de oligosacáridos de la eritropoietina no está bien definido. Se ha
visto que la eritropoietina no glicosilada reduce en gran medida la
actividad in vivo comparado con la forma glicosilada pero no
conserva actividad in vitro (Dordal et al.
Endocrinology 116, 2293 (1985); Lin patent, supra). En
otro estudio sin embargo, la eliminación de cadenas de
oligosacáridos ligados a N o ligados a O, individualmente o juntos,
por mutagénesis de residuos de asparagina o serina, que son zonas
de glicosilación, reduce fuertemente la actividad in vitro de
la eritropoietina alterada que se produce en las células de
mamíferos (Dube et al. J. Biol. Chem. 263,17516
(1998)).
Las glucoproteínas como la eritropoietina se
pueden separar en formas cargadas de modo diferente utilizando
técnicas como la concentración isoeléctrica (IEF). Se conocen
varios informes de estudios de IEF sobre preparaciones de
eritropoietina cruda y parcialmente purificada (Lukowsky et
al., J. Biochem 50, 909 (1972); Shelton et al.
Biochem. Med. 12, 45 (1975); Fuhr et al. Biochem.
Biophys. Res. Comm. 98, 930 (1981)). En estos estudios se
distinguieron por IEF, como mucho, tres o cuatro fracciones con
actividad de la eritropoietina, no se caracterizó ninguna con
respecto al contenido de carbohidratos. Además, no se estableció
ninguna correlación entre los puntos isoeléctricos de las
fracciones y su actividad biológica.
Durante la purificación de la eritropoietina
urinaria de la orina humana, tratada en Miyake et al. supra,
se mencionan dos fracciones de eritropoietina de la cromatografía
de hidroxil apatita, designadas II y IIIA, que tienen al parecer la
misma actividad específica. Un análisis ulterior de los carbo
hidratos de las fracciones II y IIIA reveló que la fracción II tenia
un contenido de ácido siálico medio superior al de la fracción IIIA
(Dordal et al. supra).
Uno de los objetos de la presente invención es
ofrecer isoformas de eritropoietina separadas y aisladas, que
tengan un contenido de ácido siálico y una actividad biológica
definidos. Las composiciones farmacéuticas que contienen dichas
moléculas tienen al parecer virtudes terapéuticas.
La invención se refiere a isoformas de
eritropoietina. También se presenta un método de preparación de una
isoforma de eritropoietina, que comprende las etapas de someter la
eritropoietina purificada a concentración isoeléctrica preparativa,
y eluir una isoforma única del gel. También se presentan
composiciones farmacéuticamente aceptables, que comprenden isoformas
de eritropoietina. Esta invención también se refiere a métodos para
aumentar los niveles de hematocritos en mamíferos, que comprende la
administración de una cantidad terapéuticamente aceptable de estas
composiciones, para aumentar la producción de reticulocitos y
glóbulos rojos.
La invención se refiere a un método de
preparación de una mezcla de moléculas de eritropoietina, que
tienen un número de ácidos siálicos por molécula mayor que o
alternativamente menor que un número predeterminado, que consiste en
someter el material que contiene la eritropoietina a cromatografía
de intercambio iónico. La invención también comprende un método de
preparación de una mezcla de moléculas de eritropoietina con un
número de ácidos siálicos por molécula superior o alternativamente
inferior a un número predeterminado de ácidos, que consiste en
someter un material que contiene eritropoietina a concentración
cromatográfica.
La fig. 1 muestra un gel de concentración
isoeléctrica analítica de las isoformas separadas de eritropoietina
recombinante. Las vías de gel 1-11 muestran
isoformas que van desde menos ácido (pl superior) en la vía 1 a más
ácido (pl inferior) en la vía 11. También se muestra eritropoietina
recombinante purificada que contiene una mezcla de isoformas
9-14 en las vías derecha e izquierda extremas del
gel.
La fig. 2 muestra la relación entre el número de
ácidos siálicos por isoforma de eritropoietina y la actividad
específica in vivo de cada isoforma, expresada como unidades
por mg de polipéptido de eritropoietina. En la fig. 2A, se
determinó con el análisis de proteína Bradford la concentración de
cada isoforma de eritropoietina; en 2B, se determinó la
concentración por absorbencia a 280 nm, en 2C, la concentración se
determinó por RIA.
La fig. 3 muestra un gel de concentración
isoeléctrica analítica de mezclas definidas de isoformas de
eritropoietina recombinante, preparado por cromatografía de
intercambio aniónico en condiciones diferentes. Las vías de gel
1-6 representan, respectivamente, isoformas de
eritropoietina eluidas en un lavado con mucha sal, después de lavar
la columna de flujo lento Q-Sepharose con 150 mM de
ácido acético, pH 4,7, 150 mM de ácido acético (sin tampón), 200 mM
de ácido acético, pH 4,7, 250 mM de ácido acético, pH 4,7, 300 mM
de ácido acético, pH 4,7 o 300 mM de ácido acético (sin tampón).
También se muestra en la vía extrema izquierda del gel,
eritropoietina recombinante purificada que contiene una mezcla de
isoformas obtenida utilizando los procedimientos descritos en el
ej. 2 de Lai et al., supra, con la diferencia de que la
cromatografía DEAE-agarosa se sustituye por
cromatografía Q-Sepharose.
La fig. 4 muestra la separación de isoformas de
eritropoietina 8 a 12 conseguidas sometiendo medio acondicionado
celular aplicado a una columna de Q-Sepharose, a un
gradiente de pH decreciente y aumentando la resistencia iónica. Las
partes de fracciones pares numeradas desde la Fracción 2 a la
Fracción 40 se sometieron a concentración isoeléctrica analítica.
También se muestra en la vía extrema izquierda del gel
eritropoietina recombinante purificada que contiene una mezcla de
isoformas obtenidas utilizando los procedimientos descritos en el
Ej. 2 de Lai et al., supra, con la diferencia de que la
cromatografía DEAE-agarosa se sustituye por
cromatografía Q-Sepharose.
Según la presente invención, se presentan
isoformas de eritropoietina. La concentración isoeléctrica (IEF)
separa proteínas sobre la base de la carga. Cuando se sitúan en un
gradiente de pH y se someten a un campo eléctrico, las proteínas
migran hacia el punto en el que no tienen carga neta y permanecen
ahí. Este es el punto isoeléctrico (pl) de la proteína. Cada banda
distinta observada en IEF representa moléculas que tienen un pl
particular y por consiguiente la misma carga global, y recibe el
nombre de isoforma. El término "isoforma de eritropoietina"
utilizado aquí se refiere a preparados de eritropoietina que tienen
un solo pl y la misma secuencia de amino ácidos.
En una realización preferida, la eritropoietina
es el producto de la expresión de una secuencia exógena de ADN, que
ha sido transfectado en una célula anfitriona eucariótica no
humana, es decir, en una realización preferida, la eritropoietina
es "eritropoietina recombinante". La eritropoietina
recombinante se produce ventajosamente según los procedimientos
descritos en la patente US 4,703,008, de propiedad común de Lin,
que se incorpora aquí a modo de referencia. La eritropoietina
recombinante se purifica ventajosamente según los procedimientos
generales descritos en el ej. 2 de la patente US 4,667,016, de los
que son titulares Lai et al., que se incorporan aquí como
referencia o alternativamente, el procedimiento descrito en el ej.
2 en el que la cromatografía DEAE-agarosa se
sustituye por cromatografía Q-Sepharose. En la
modificación de la columna Q-Sepharose, 55 mM NaCl
sustituyen 25 mM NaCl en la solución tampón utilizada para llevar a
la columna a un pH neutro, y 140 mM NaCl sustituyen 75 mM NaCl en
la solución tampón utilizada para eluir eritropoietina de la
columna. Este material, cuando se analiza por electrofóresis de gel
de sodio dodecil sulfato poliacrilamida migra como una sola especie
(es decir banda). Cuando se somete eritropoietina modificada a IEF,
aparecen en el gel bandas múltiples, que indican que se encuentran
presentes formas cargadas diferentemente de la glucoproteína.
Se ha visto que las isoformas separadas de
eritropoietina recombinante, que tienen la secuencia de amino
ácidos de la eritropoietina humana derivada de la orina,
corresponden a moléculas de eritropoietina que tienen de 1 a 14
ácidos siálicos, y cada isoforma presente en eritropoietina
recombinante purificada tiene una actividad in vivo
relacionada con el número de ácidos siálicos que posee la isoforma.
El término "eritropoietina" utilizado aquí incluye
eritropoietinas naturales, eritropoietina humana derivada de la
orina así como polipéptidos no naturales que tienen una secuencia
de amino ácidos y una glicosilación suficientemente duplicativa de
la eritropoietina natural para que pueda tener propiedades
biológicas in vivo que favorecen el incremento, por parte de
las células de la médula ósea, de la producción de reticulocitos y
glóbulos rojos.
Las preparaciones crudas de eritropoietina tienen
muchas isoformas pero el material purificado p.e., en la patente de
Lai et al. anterior, ej. 2, contiene predominantemente seis
isoformas cuando se analiza por IEF. Además, se ha detectado por lo
menos una isoforma adicional de mayor acidez utilizando los
procedimientos cromatográficos descritos en el ej. 4 (esta forma más
ácida, que migra a >14 ácidos siálicos sobre un gel IEF puede
contener cargas negativas de ácido no siálico como lo muestra la
resistencia de alguna de las cargas a la digestión por sialidasa).
Estas isoformas difieren entre sí por su contenido en ácido
siálico. Como se puede ver en los ejemplos, esto se demuestra
aislando 10 de estas isoformas por medio de IEF preparativo y
determinando el contenido de ácido siálico de 5 de las mismas. Se
ha visto que de las isoformas sometidas a análisis para determinar
el contenido de ácido siálico, cinco de las mismas contenían 9, 10,
11, 12 ó 13 residuos de ácido siálico.
Existe una relación entre la actividad específica
relativa in vivo de la eritropoietina y el número de
residuos de ácido siálico por molécula de eritropoietina de las
isoformas 5 a 11 (cada una de las isoformas se designa aquí por el
número de ácidos siálicos por molécula de eritropoietina). Las
isoformas 11 a 14 tienen aproximadamente la misma actividad
específica relativa in vivo. Se analiza la actividad in
vivo de las isoformas 5-14 mediante el
bioanálisis de ratón exhipóxico policitémico y la cantidad de cada
isoforma presente se determina mediante el análisis de proteína
Bradford, la absorbencia a 280 nm o por radioinmunoanálisis (RIA)
de eritropoietina. Las determinaciones de RIA (Egrie et al.,
Immunobiology 172, 213, (1986)), expresadas como
unidades/ml, se dividen por 212,770 unidades/mg de polipéptido de
eritropoietina, la actividad específica media de eritropoietina
purificada determinada por RIA, dan concentraciones de proteína de
isoformas aisladas o mezclas de isoformas expresadas como mg de
polipéptido de eritropoietina/ml. Como se muestra en los ejemplos,
las actividades específicas relativas in vivo aumentan
gradualmente de la isoforma 5 a la isoforma 11 (véase cuadro
2).
Las actividades específicas in vivo aquí
mencionadas son medidas de las actividades específicas relativas
in vivo y no son medidas de las actividades específicas
absolutas in vivo. A los efectos de la presente aplicación,
las actividades específicas se utilizan únicamente para comparar
actividades relativas de isoforma que han sido analizadas utilizando
el mismo ensayo, utilizando las mismas condiciones, inclusive la
misma norma interna, el mismo tipo de animales, con el mismo
análisis de los datos utilizados para calcular la actividad
específica, el mismo análisis para determinar el contenido de
proteína. No se pretende que ningún valor de la actividad específica
in vivo obtenido para una isoforma represente un valor
inherente o absoluto de dicha isoforma.
La invención presenta isoformas de
eritropoietina. Las isoformas de eritropoietina específicas,
obtenidas según la presente invención y sus propiedades, pueden
variar según la fuente del material de partida. Por ejemplo, las
isoformas de eritropoietina humana derivada de la orina son
diferentes a las isoformas de eritropoietina recombinante. En una
realización preferida, la invención se refiere a una isoforma de
eritropoietina que tiene un número específico (es decir un número
fijo mayor que cero) de ácidos siálicos por molécula de
eritropoietina, número elegido dentro del grupo
1-14. Ventajosamente dicho número es 9, 10, 11, 12,
13 ó 14. En otra realización, dicho número es superior a 14,
ventajosamente 16-23.
La invención también ofrece composiciones que
comprenden dos o más isoformas de eritropoietina. En una
realización, las composiciones comprenden una mezcla de isoformas
con un número de ácidos siálicos por molécula de eritropoietina
superior a un número predeterminado, es decir superior a 11 ácidos
siálicos por molécula de eritropoietina, o superior a 12 ácidos
siálicos por molécula, p.e. una mezcla de isoformas 12, 13 y 14. En
otra realización, las composiciones comprenden mezclas de isoformas
que tienen un número predeterminado de ácidos siálicos por molécula
de eritropoietina, menos de 12, aunque más de 8 ácidos siálicos por
molécula como p.e. en una mezcla de isoformas 9, 10 y 11. La
invención también presenta composiciones de isoformas de
eritropoietina en las que las cantidades relativas de las isoformas
son iguales o diferentes. Por ejemplo, una mezcla de isoformas 9,
10 y 11 puede tener las isoformas presentes en una diversidad de
proporciones como: 1:1:1, 2:3:1 ó 20:20:1.
Ventajosamente, las composiciones comprenden
mezclas de menos de cuatro isoformas, p.e. una mezcla de isoformas
11, 12 y 13, ó una mezcla de 12 y 14 ó de 7 y 13.
Con el objeto de producir mezclas de isoformas de
eritropoietina, la presente invención ofrece también métodos para
aislar simultáneamente isoformas de eritropoietina. Estos métodos
incluyen el aislamiento de isoformas individuales por medio de
técnicas tales como la concentración isoeléctrica preparativa o la
preparación de mezclas de isoformas que tienen un número determinado
de ácidos siálicos por molécula (p.e. más de 11) mediante técnicas
como la cromatografía de intercambio fónico o la concentración
cromatográfica. Todas estas técnicas se basan en la separación de
proteínas según la carga.
En general, la cromatografía de intercambio
fónico y la concentración cromatográfica supone la aplicación de
eritropoietina humana natural (medios acondicionados de célula) o
material purificado, a una resina de columna, en condiciones que
permiten fijar algunas o todas las isoformas de la eritropoietina a
la resina. Para las preparaciones de eritropoietina natural es
preferible aplicar la proteína a la columna a aproximadamente pH 7,
mientras que para preparaciones purificadas, la proteína se puede
aplicar a la columna desde pH 7 hasta pH 4. Después de lavar la
columna con tampón a aproximadamente pH 4, las isoformas de
eritropoietina que permanecen unidas sobre la columna de
intercambio fónico se eluyen incrementando el pH y la concentración
salina del tampón o aplicando un gradiente de pH decreciente y
aumentando la resistencia fónica a aproximadamente pH 4. Para la
concentración cromatográfica, las isoformas se eluyen de la columna
mediante un gradiente de pH decreciente o lavando la columna con
una elevada concentración de sal.
En una realización, la invención se refiere a
células anfitrionas de mamífero (p.e. ovario de hámster chino, CHO)
que sintetizan preferentemente isoformas de eritropoietina con un
número de ácidos siálicos superior a cierto número específico, p.e.
superior a 10 ácidos siálicos por molécula. Las moléculas de
eritropoietina tienen estructuras de oligosacáridos ligados a N ó
ligados a O que pueden limitar el contenido de ácido siálico de la
molécula. Por ejemplo, los oligosacáridos ligados a N
tetra-antenarios (de cuatro ramificaciones) suelen
proporcionar cuatro posibles zonas para la unión de ácido siálico,
mientras que las cadenas de oligosacáridos bi- y
tri-antenarias que pueden sustituir la forma tetra
antenaria en zonas ligadas a la asparagina, suelen tener como mucho
solamente dos o tres ácidos siálicos unidos. Los oligosacáridos
ligados a O suelen proporcionar dos zonas para la fijación de ácido
siálico. Por consiguiente, las moléculas de eritropoietina pueden
acomodar un total de 14 residuos de ácido siálico, con tal de que
los tres oligosacáridos ligados a N sean
tetra-antenarios. Se criban cultivos celulares de
mamífero para determinar aquellas células que añaden de preferencia
cadenas tetra-antenarias a eritropoietina
recombinante, maximizando el número de zonas para la fijación de
ácido siálico.
Los oligosacáridos ligados a N de eritropoietina
urinaria contienen ácido siálico en una unión de \alpha 2,3 y
\alpha 2,6 con galactosa (Takeuchi et al. J. Biol. Chem.
263, 3657 (1988)). Por lo general, el ácido siálico en el
enlace \alpha 2,3 se añade a galactosa sobre la ramificación
\alpha 1.6 de manosa y el ácido siálico en el enlace \alpha 2,6
se añade a la galactosa en la ramificación \alpha 1,3 de manosa.
Las enzimas que añaden estos ácidos siálicos
(\beta-galactósido \alpha 2,3 sialiltransferasa
y \beta-galactósido \alpha 2,6
sialiltransferasa) presentan eficacia máxima al añadir ácido
siálico a las ramificaciones manosa \alpha 1,6 y manosa \alpha
1,3 respectivamente.
Las células de ovario de hámster chino (CHO) con
déficit de dihidrofolato reductasa (DHFR) suelen ser una célula
anfitriona, habitualmente utilizada para la producción de
glucoproteínas recombinantes, inclusive eritropoietina
recombinante. Estas células no expresan la enzima
\beta-galactósido \alpha 2,6 sialiltransferasa
y, por consiguiente, no añaden ácido siálico en el enlace \alpha
2,6 a oligosacáridos ligados a N de glucoproteínas producidas en
estas células. (Mutsaers et al. Eur. J. Biochem. 156,
651 (1986); Takeuchi et al. J. Chromatogr. 400, 207
(1987). Por consiguiente, la eritropoietina recombinante producida
en células CHO carece de ácido siálico en el enlace 2.6 a galactosa
(Sasaki et al. (1987), supra; Takeuchi et al.
(1987), supra). En otra realización de la invención, la
eritropoietina utilizada para producir las isoformas se produce en
células CHO transfectadas con un gen funcional de
\beta-galactósido \alpha 2,6 sialiltransferasa
para permitir la incorporación de ácido siálico en el enlace
\alpha 2,6 a galactosa. Véase Lee et al. J. Biol. Chem.
264, 13848 (1989), que se incorpora aquí a modo de
referencia y descripción de técnicas para la creación de células
CHO modificadas u otras células anfitrionas de mamífero.
En la invención también se describen ciertos
análogos de eritropoietina humana. Tal como se utiliza aquí, la
expresión "análoga de eritropoietina humana" se refiere a
eritropoietina con uno o más cambios en la secuencia de aminoácidos
de eritropoietina humana, que se traduce en un aumento del número
de zonas para la fijación de ácido siálico. Los análogos son
generados por mutagénesis, dirigidos a zonas que tienen adiciones,
deleciones o sustituciones de residuos de aminoácidos que alteran
las zonas disponibles para la glicosilación. Estos análogos tienen
un número de cadenas de carbohidrato mayor que la eritropoietina
humana.
Los análogos que se traducen en una actividad
biológica mayor se construyen aumentando el contenido de ácido
siálico de la molécula de eritropoietina. Los análogos que tienen
niveles de ácido siálico superiores a los encontrados en la
eritropoietina humana se generan añadiendo zonas de glicosilación
que no perturban la conformación secundaria o terciaria requerida
para la actividad biológica. De forma ventajosa, el análogo de
eritropoietina humana tiene 1, 2 ó 3 zonas adicionales para la
glicosilación N ó la glicosilación O. Por ejemplo, una leucina en
posición 69 es sustituida por una asparagina para dar la secuencia
Asn-Leu-Ser, que sirve de cuarta
zona para la glicosilación N. Este cambio suele proporcionar hasta
cuatro ácidos siálicos adicionales por molécula.
Como ejemplos de otros cambios que generan
glicosilación N u O adicional se pueden citar las alaninas en las
posiciones 125 y 127 para asparagina y serina respectivamente,
alanina en la posición 125 para treonina y alaninas en posiciones
124 y 125 para prolina y treonina, respectivamente. Según podrán
apreciar los técnicos en la materia, la descripción incluye otros
muchos análogos de eritropoietina humana con zonas adicionales para
la glicosilación.
La invención también comprende composiciones
farmacéuticas con una cantidad terapéuticamente eficaz de una
isoforma específica o mezcla de isoformas junto con un diluyente,
un adyuvante y/o un vehículo adecuados, útiles en la terapia de
eritropoietina. Una "cantidad terapéuticamente eficaz" como
aquí se indica, se refiere a la cantidad que proporciona efecto
terapéutico en una condición y en un régimen de administración
determinado. La administración de isoformas de eritropoietina se
realiza por lo general por vías parenterales. La vía específica
elegida dependerá de la enfermedad tratada. La administración de
isoformas de eritropoietina se realiza de preferencia como parte de
una formulación que contiene un vehículo adecuado, como albúmina de
suero humano, un diluyente adecuado, como una solución salina
tampón y/o un adyuvante adecuado. Las dosis requeridas serán
cantidades suficientes para aumentar los hematocrito del paciente y
variarán según la gravedad de la enfermedad que se trata, el método
de administración utilizado y similares.
Los siguientes ejemplos se ofrecen para ilustrar
de forma más completa la invención aunque no se tienen que
interpretar como limitación del ámbito de la misma. La
eritropoietina standard utilizada en los
bio-análisis in vivo utilizados en los
ejemplos es una eritropoietina recombinante standard normalizada
respecto de un standard de eritropoietina urinaria purificada. Por
consiguiente, sólo se miden actividades específicas in vivo
relativas. Las actividades específicas in vivo se expresan
también en "unidades/ml", "unidades/mg" y
unidades/A_{280}" y no como "IU/ml" "IU/mg" y
IU/A_{280}", ya que el standard de eritropoietina utilizado no
ha sido correlacionado directamente con ningún standard
internacional existente.
La eritropoietina recombinante se produce en la
forma descrita en Lin, supra. La eritropoietina recombínante
utilizada como material de partida para el primer y el tercer
aislamiento de isoforma se purifica según el procedimiento descrito
en el ejemplo 2, cuyos titulares son Lai et al. El material
de partida para el segundo y el quinto aislamiento de isoformas se
purifica según Lai et al., supra utilizando la modificación
de cromatografía Q-Sepharose. Estas preparaciones
contienen una mezcla de isoformas de eritropoietina recombinante
que tienen la misma secuencia de aminoácidos que la eritropoietina
humana derivada de la orina y contienen predominantemente isoformas
9 a 14. El material de partida para la cuarta preparación de
isoformas es el material que se eluye durante el lavado de 5 mM
ácido acético/1 mM glicina/6M urea de la columna de intercambio
aniónico del ej. 2 de Lai et al. Esta fracción contiene
isoformas en un número inferior o igual a 9 ácidos siálicos y se ha
seguido purificando por cromatografía de filtración de gel según se
describe en el ej. 2 de Lai et al, antes de utilizarla en el
procedimiento de concentración isoeléctrica preparativa. La sexta
preparación de isoforma utilizaba como material de partida una
preparación purificada de eritropoietina recombinante que tiene de
4 a 13 residuos siálicos. Este material se purificó según el ej. 2
de Lai et al., con la excepción de una modificación en la
columna de intercambio iónico (elusión de la eritropoietina
recombinante con un gradiente de cloruro sódico a pH 8,4 y omisión
del lavado ácido acético/urea) que tiene como resultado la
retención de la mayoría de las isoformas presentes en el material
de partida.
Se realizan seis preparaciones diferentes de
isoformas individuales mediante concentración isoeléctrica
preparativa en un lecho de gel granulado (Ultrodex, LKB)
esencialmente según Nota de Aplicación de LKB 198. Se utilizan
Pharmalyte (Pharmacia) 2.5-5 amfolitos (Pharmacia)
y el lecho de gel contiene 5 M urea.
En la primera preparación se aplican al gel
aproximadamente 20 mg de eritropoietina recombinante en 6,8 ml de
20 mM citrato sódico/100 mM cloruro sódico, pH 7,0 y se concentran
a 8 vatios durante aproximadamente 16 horas. Después de la
concentración isoeléctrica, se visualizan las bandas de isoforma en
el gel mediante una impresión de contacto en papel del lecho de gel.
La impresión se hace y luego se fija impregnando en tres cambios
(aproximadamente 10 min. cada uno, temperatura ambiente) de
solución de fijación (40% metanol/10 ácido acético/10% TCA/3,5%
ácido sulfosalicílico), se someten a un cambios (aproximadamente 10
min.) de 40% metanol/10% ácido acético (30-60°C), se
colorea durante 15 minutos a 60°C en 0,125% Coomassie Blue
R-250/40% metanol/10% ácido acético, y luego se
descolora en 7,5% de metanol/10% ácido acético con el objeto de
visualizar las isoformas separadas. Se quita la región del lecho de
gel granulado que contiene las isoformas (aproximadamente 50% de la
resina), se añade agua (aproximadamente 16 ml), y se vierte la
mezcla espesa en una bandeja de 5,5 x 24,5 pulgadas y se evapora
hasta un peso neto de aproximadamente 40 g. Esta preparación se
concentra una segunda vez y se realiza la forma indicada
anteriormente en una impresión de contacto del lecho del gel. La
parte de gel que contiene cada una de las seis isoformas
discernibles se quita del lecho de gel.
Con el fin de eluir las isoformas del gel, se
añade una solución de 10 mM Tris-HCl, pH 7,0/5 mM
Chaps a cada isoforma para generar una mezcla espesa. Las pastas se
colocan en pequeñas columnas y se lavan con el tampón
Tris-Chaps. Se recogen lo que ha pasado a través y
se aplica por separado pequeñas columnas (configuración de columna
abierta) que contienen Vydac C4 resina de fase invertida
equilibrada en 20% etanol/10 mM Tris-HCl, pH 7,0.
Las columnas se desarrollan gradualmente con 20% de etanol/10 mM
Tris-HCl, pH 7,0, 35% etanol/10 mM
Tris-HCl, pH 7,0 y 65% etanol/10 mM
Tris-HCl, pH 7,0. Se diluye 1:1 con 10 mM
Tris-HCl, pH 7,0 la fracción eluyente a 65% de
etanol/10 mM Tris y se somete a concentración y luego se cambia el
tampón por 10 mM Tris-HCl, pH 7,0 utilizando un
microcentrador Centricon-10 (Amicon). La
concentración isoeléctrica analítica de esta preparación se realiza
prácticamente en la forma descrita en la Nota Técnica LKB 250
utilizando Servalyte 3-5 amfolinas (Serva) en un
gel de poliacrilamida que contiene 5 M de urea.
En una segunda preparación, se aplican
aproximadamente 26 mg de eritropoietina recombinante en 6,5 ml de
agua desionizada al gel y se concentra a 2,5 vatios durante 35 min.
y 10 vatios durante aproximadamente 17 horas. Las bandas de
proteína concentrada, que son visibles en el lecho de gel, se quitan
para formar 11 grupos diferentes. Cada grupo se lleva hasta 7,5 ml
con agua desionizada y 20 ml de cada uno de los sobrenadantes
resultantes del grupo se somete a concentración isoeléctrica
analítica según lo descrito anteriormente. A cada uno de los grupos
se añaden 5 ml de 1,5 mM Tris-HCl, pH 8,8 y los
lodos se colocan cada uno en pequeñas columnas, dejando que pase a
través de las mismas la fase líquida. La resina se lava con
aproximadamente 3 volúmenes de 0,5 M Tris-HCl, pH 7
y la solución de enjuague se combina con lo que pasa a través. La
resina se lava con aproximadamente 3 volúmenes de 0,5 M
Tris-HCl, pH 7 y la solución de enjuague se combina
con lo que pasa a través. Los eluyentes se concentran y cambian de
tampón a 20 mM citrato sódico/100 mM cloruro sódico, pH 7,0
utilizando dispositivos de ultrafiltración de un solo uso Amicon,
que tienen un umbral de peso molecular de 10.000 dalton. Las
soluciones concentradas (aproximadamente 0,5 ml) se hacen pasar
entonces a través de un filtro de acetato de celulosa de un umbral
de 0,22 \mu. Sobre la base de la concentración isoeléctrica
analítica, se observa que 5 grupos contienen predominantemente las
isoformas individuales 10, 11, 12, 13 y 14.
En una tercera preparación, se aplica
aproximadamente 30 mg de eritropoietina recombinante en 21,8 ml de
agua destilada al gel y se concentra a 2 vatios durante 25 min., 10
vatios durante 20 horas y 15 vatios durante 15 min. Se observan
visualmente las bandas de proteína correspondientes a las isoformas
individuales y se quitan del lecho de gel. Se añade agua destilada a
las isoformas aisladas en el gel para generar una pasta y se
analizan los sobrenadantes resultantes por concentración
isoeléctrica analítica. Se añade un volumen igual de 1 M
Tris-HCl, pH 7.2 a cada pasta, se colocan las
suspensiones en pequeñas columnas separadas y se deja que la fase
líquida pase a través de la columna para eluir las isoformas. Se
concentra lo que ha pasado a través y se cambia de tampón, 20 mM
citrato sódico/100 mM cloruro sódico, pH 7,0 utilizando
dispositivos de ultrafiltración desechables Amicon que tienen un
umbral de peso molecular de 10.000 dalton. Un gel de concentración
isoeléctrica analítica reveló que se obtenían grupos que contenían
predominantemente las isoformas individuales 9, 10, 11, 12, 13 y
14.
Una cuarta preparación de isoforma utilizaba como
material de partida eritropoietina que contenía isoformas
3-9 (preparadas en la forma descrita
anteriormente). Antes de realizar la concentración isoeléctrica
preparativa prácticamente en la forma descrita para las
preparaciones 1-3 anteriores, se
pre-fraccionaron los amfolitos (Pharmalyte
2,5-5) en un Rotofor (Bio-Rad,
Richmond, CA) célula de concentración isoeléctrica de fase líquida,
para obtener una gama de amfolitos más adecuadas para los puntos
isoeléctricos inferiores del material de partida. El
pre-fraccionamiento se realizó mezclando 6,7 mL de
Pharmalyte 2,5-5 con 15 g de urea y añadiendo agua
purificada para llevar el volumen a 50 ml. Esta mezcla se fraccionó
en el Rotofor a 10 vatios, 1°C durante 5 1/2 horas utilizando ácido
fosfórico 0,1 M e hidróxido sódico 0,1 M como anolito y catolito,
respectivamente. Las fracciones de amfolito que tenían pH medidos
entre 4,5 y 6 aproximadamente se utilizaron en la concentración
isoeléctrica de lecho plano.
Se quitaron amfolitos de las isoformas utilizando
un Centrieluter (Amicon, Danvers, MA) y un Centricon (Amicon) de un
umbral de peso molecular de 10.000 utilizando los siguientes
parámetros: 0,18 tampón Tris pH 8,8, 100 voltios,
25-30 mA, durante 3 horas. Las isoformas
intercambiaron tampón en cloruro sódico 0,1 M por filtración de gel
utilizando Sephadex G-25 (Pharmacia). La
concentración isoeléctrica analítica de los 5 grupos resultantes
mostró que contenían isoformas 4, 5, 6, 7 y 8. La isoforma 4
apareció con diversas bandas, indicando que puede haber
experimentado cierta degradación.
La quinta preparación de isoforma se modificó
añadiendo una etapa de preconcentración al procedimiento de
concentración isoeléctrica de lecho plano. En esta modificación, no
se añadió la proteína a la mezcla de amfolito/urea/gel antes de la
electrofóresis sino que se añadió al aparato de concentración
isoeléctrica tras la generación del gradiente pH en el lecho de gel.
Tras la pre-concentración durante 75 min. (1500
voltios/hora), se quitó la sección de lecho de gel de
2,25-4,25 cm del cátodo, se mezcló con la solución
de eritropoietina y se volvió a añadir al lecho de gel. Tras la
concentración isoeléctrica, se eluyeron del lecho de gel isoformas
10, 11, 12, 13 y 14 y se separaron de los amfolitos por
ultrafiltración utilizando dispositivos
Centricon-10 (Amicon).
La modificación de
pre-concentración se realizó para hacer que las
características de absorbencia ultravioleta de las preparaciones de
isoformas fueran más similares a las de la eritropoietina
recombinante inicial. Esta mejora en la característica espectral se
puede ver en la proporción de absorbencia en 280 y 260 nm para las
isoformas aisladas. La proporción media de absorbencia en 280 nm
respecto de 260 nm (A280/A260) para isoformas de las preparaciones
2 y 3 (no pre-concentradas) es 1,36 \pm 0,11
mientras que la proporción media A280/A260 para la preparación 5 y
6 (pre-concentrada) es de 1,68 \pm 0,20. Cuando
se excluyó la isoforma número 14 del cálculo, las relaciones medias
A280/A260 son de 1,39 \pm 0,11 y 1,74 \pm 0,09 para las
preparaciones 2 y 3 y 5 y 6, respectivamente. (La isoforma 14 puede
tener el espectro más atípico, ya que está presente en las
cantidades más pequeñas y está por lo tanto más sujeto a
interferencias por contaminación de traza de componentes de
amfolito o porque está más cerca del electrodo durante el
procedimiento de concentración isoeléctrica de lecho plano). La
relación media A280/A260 para eritropoietina recombinante preparada
según el ej. 2 de Lai et al (modificada según lo descrito
anteriormente utilizando Q-Sepharose como resina de
intercambio aniónico) es de 1,91 \pm 0,04.
Según lo descrito anteriormente, el material
inicial para la preparación de isoformas n° 6 era una preparación
de eritropoietina recombinante que contenía las isoformas
4-13. Los amfolitos se
pre-concentraron en el aparato Rotofor tal como se
hizo en la cuarta preparación. Se utilizaron fracciones de amfolitos
que tenían pH medidos comprendidos entre 3,7 y 4,8 para la
concentración isoeléctrica de lecho plano. El lecho plano se
pre-concentró como en la pasada n° 5 y se
obtuvieron las isoformas 9, 10, 11, 12 y 13 después de
ultrafiltración (Centricon-10) para quitar los
amfolitos portadores.
Las isoformas aisladas en la forma descrita en el
ej. 1 y la eritropoietina purificada según los procedimientos
descritos en Lai et al, supra (mezclas de isoformas 9 a 14)
cambian de tampón, cloruro sódico 0,10-0,15 M y se
analiza su contenido de ácido siálico mediante una modificación del
procedimiento de Jourdian et al. J. Biol. Chem. 246,
430 (1971). Los residuos de ácido siálico se separan de las
glucoproteínas por hidrólisis con ácido sulfúrico 0,35 M a 80°C
durante 30 min. y las soluciones se neutralizan con hidróxido
sódico antes del análisis. Para estimar la cantidad de proteína
eritropoietina presente, se realiza, en la forma standard un
análisis de proteína Bradford (Bradford Anal. Biochem. 72,
248 (1976)) utilizando eritropoietina recombinante que tiene la
secuencia de amino ácidos de la eritropoietina standard utilizando
los reactivos de análisis y el procedimiento del
micro-método facilitado por Bio-Rad.
Los resultados, expresados como moles de ácidos siálicos por mol de
eritropoietina se muestran en el cuadro 1. Las isoformas se
designan según el número de ácidos siálicos por molécula y van
desde menos ácida (isoforma 9) a más ácida (isoforma 13). En las
vías de gel 6-10 de la fig. 1 se muestran las
isoformas 9-13. Las cantidades de isoformas 14 son
insuficientes para medir de forma precisa el contenido de ácido
siálico. El contenido de ácido siálico de esta isoforma se deduce
de su migración en geles IEF con respecto a otras isoformas. El
contenido de ácido siálico de isoformas 5-8
(preparación n° 4) no se ha medido, aunque se deduce probablemente
de su migración en geles IEF.
Isoforma de eritropoietina | Moles de ácido siálico/mol de eritropoietina |
Isoforma 13 | 12,9 \pm 0,5 |
Isoforma 14 | 11,8 \pm 0,2 |
Isoforma 11 | 11,0 \pm 0,2 |
Isoforma 10 | 9,8 \pm 0,3 |
Isoforma 9 | 8,9 \pm 0,3 |
Mezcla de isoformas (9-14) | 11,3 \pm 0,2 |
Las isoformas aisladas según se describe en el
ej. 1 se someten a análisis de absorbencia a 280 nm, con el
análisis de proteína Bradford y RIA para la eritropoietina, con el
objeto de determinar la cantidad de eritropoietina recombinante
presente. Se utiliza el bioanálisis de ratón exhipóxico
policitémico (Cotes et al. Nature 191, 1065 (1961))
para determinar la actividad biológica relativa in vivo. La
cuantificación de la cantidad de eritropoietina proteína presente
utilizando un radio-inmunoanálisis para
eritropoietina dio resultados que presentaban una actividad
específica relativa in vivo más elevada para ciertas
isoformas, debido una aparente reducción de
inmuno-reactividad de isoformas que contenían
grandes cantidades de ácido siálico, lo cual conducía a una infra
evaluación de la concentración de eritropoietina y por consiguiente
una sobre evaluación de la actividad relativa específica in
vivo para las isoformas más negativas. Las determinaciones del
bioanálisis de ratón, expresadas como unidades/ml se dividen por las
concentraciones de proteína correspondientes para dar las
actividades específicas in vivo expresadas como unidades/mg
eritropoietina polipéptido. Estas actividades específicas se
muestran en el cuadro 2. En el cuadro 2, "n" es el número de
preparaciones de isoformas independientes que contribuyen al valor
de la actividad específica. En la mayoría de los casos se realizaron
varios análisis in vivo sobre cada preparado de isoforma.
Los mismos datos in vivo contribuyen a los cálculos de la
actividad específica para las tres columnas; las unidades/mg de
eritropoietina polipéptido se determinaron por la absorbencia a 280
nm, a partir de potencias de radioinmunoanálisis o de resultados
del análisis de proteína Bradford. Se utilizó eritropoietina
recombinante purificada que contenía isoformas 9-14
como standard en el análisis de proteína Bradford. "n" puede
ser inferior para el cálculo realizado utilizando el análisis de
proteína Bradford, ya que algunos preparados ya no se encontraban
disponibles en el momento en que se realizaron los análisis
Bradford.
La eritropoietina purificada según los
procedimientos descritos en Lai et al., supra y que
contienen una mezcla de isoformas 9 a 14 se utiliza como standard
para los análisis RIA y los análisis in vivo.
Las actividades específicas relativas expresadas
como unidades/mg de eritropoietina polipéptido se pueden convertir
a unidades/A_{280} multiplicando por 0,807 mg eritropoietina
polipéptido/A_{280}. El factor de conversión se obtiene
multiplicando el coeficiente de extinción de eritropoietina (1,345
mg/A280) por el contenido de proteína de la eritropoietina
glucoproteína (aproximadamente 60% en peso, Davis et al.,
Biochemistry 26, 2633 (1987)) para obtener mg eritropoietina
polipéptido/A_{280} (es decir 1,345 mg eritropoietina/A_{280} x
0,60 polipéptido/mg eritropoietina = 0,807 mg
polipéptido/A_{280}). Además se pueden multiplicar actividades
específicas expresadas como unidades/mg de eritropoietina
polipéptido por el factor 0,60 mg polipéptido/mg eritropoietina
glucoproteína para obtener actividades específicas expresadas como
unidades/mg eritropoietina glucoproteína.
Los datos del cuadro 2 se presentan también
gráficamente en las figs. 2A, 2B y 2C. Estos datos muestran que la
actividad relativa in vivo de la eritropoietina aumenta en
función del contenido de ácido siálico hasta la isoforma n° 11. Las
isoformas 11-14 tienen prácticamente la misma
bioactividad relativa in vivo. (Esto se ve claramente cuando
la concentración de isoforma 14 se expresa utilizando el valor del
análisis Bradford. El valor Bradford puede ser más preciso para la
isoforma 14 debido a los niveles, generalmente bajos, obtenidos y a
la dificultad resultante en la determinación de A_{280} y la
reducción muy aparente de reactividad en el RIA de formas muy
negativas tratadas anteriormente). La mayor actividad específica
relativa in vivo de las isoformas de eritropoietina que
tienen más ácidos siálicos se debe con toda probabilidad a una
semi-vida de circulación más larga de estas formas.
Las isoformas 9 y 13 se marcaron con yodo radioactivo (^{125}I) y
se determinó su tasa de aclaramiento en ratas. La
semi-vida en circulación fue notablemente más larga
para isoforma 13 que para la isoforma 9.
Se concentran medios acondicionados celulares
procedentes de la producción de eritropoietina recombinante según
los procedimientos descritos en Lin, supra y se diafiltran
contra 10 mM Tris, pH 7.2. Se determina la concentración de
proteína por el análisis de microproteína Bradford utilizando como
standard, albúmina de suero bovino. 19,6 ml de la solución que
contiene 40 mg de proteína total se hace 20 \muM en CuSO_{4},
se filtra a través de un filtro de valor discriminatorio de 0,45
micras y se carga sobre una columna de 4 ml de volumen de lecho
(1,05 cm de altura x 2,2 cm de diámetro) concentrado con
Q-Sepharose Fast Flow (Pharmacia) que se ha
equilibrado con 10 mM Tris, pH 6,8 a 7,0 a 4°C. Después de la
aplicación de la muestra, se lava la columna con dos volúmenes de
columna del mismo tampón. El caudal de la columna es de
aproximadamente 1 ml/min. Se instalan seis columnas separadas que
utilizan este procedimiento para elegir mezclas de isoforma de
eritropoietina definidas.
Se lavan las columnas con 6 a 9 volúmenes de
columna de un tampón de bajo pH constituido por: columna n° 1,
150mM de ácido acético, 1 mM glicina, 20 \muM CuSO_{4}, 6 M
urea ajustada a pH 4,7 con NaOH; col. n° 2, 200 mM ácido acético, 1
mM glicina, 20 \muM CuSO_{4}, 6 M urea ajustada a pH 4,7 con
NaOH; col. n° 3, 250 mM ácido acético, 1 mM glicina, 20 \muM
CuSO_{4}, 6 M urea ajustada a pH 4,7 con NaOH; col. n° 4, 300 mM
ácido acético, 1 mM glicina, 20 \muM CuSO_{4}, 6 M urea
ajustada a pH 4,7 con NaOH; col. n° 5, 150 mM ácido acético, 1 mM
glicina, 20 \muM CuSO_{4}, 6 M urea; col. n° 6, 300 mM ácido
acético, 1 mM glicina, 20 \muM CuSO_{4}, 6 M urea. El pH de las
columnas se aumenta hasta aproximadamente pH 7 lavando cada una con
8 a 11 volúmenes de columna de 10 mM Tris-HCl, 55
mM NaCl, 20 \muM CuSO_{4}, pH 7. Las mezclas de isoforma de
eritropoietina definida se eluyen de las columnas lavando con 10 mM
Tris-HCl, 140 mM NaCl, 20 \muM CuSO_{4}, pH
7.0.
Los grupos de isoformas eluidas de cada columna
se concentran y se cambia el disolvente por agua utilizando un
micro concentrador Amicon Centricon-10. Los
resultados de la concentración isoeléctrica analítica de estos
grupos concentrados se muestran en la fig. 3. Las vías de gel
1-6 representan mezclas de isoforma de
eritropoietina definida eluidas de la columna 1, 5, 2, 3, 4 y 5
respectivamente. La "mezcla de isoforma" mostrada en la vía de
gel más a la izquierda de la fig. 3 representa el medio celular que
se aplica a una columna Q-Sepharose según lo
descrito anteriormente, se lava la columna con 5 mM ácido acético,
1 mM glicina, 20 \muM CuSO_{4}, 6 M de urea y la mezcla de
isoforma de eritropoietina se eluye de la columna utilizando los
procedimientos descritos anteriormente. Esta mezcla eluida de
isoformas se sigue purificando según los procedimientos descritos
en Lai et al., supra antes de la concentración isoeléctrica
analítica.
En otro procedimiento, se separan isoformas de
eritropoietina utilizando un gradiente de pH decreciente y
resistencia iónica creciente. La eritropoietina
dia-filtrada concentrada que contiene el medio se
carga en una columna de Q-Sepharose con una
proporción de aproximadamente 40 mg total de proteína/ml de gel. La
columna se lava entonces con aproximadamente 2 volúmenes de columna
de 10 mM Tris-HCl, pH 7,0 y luego aproximadamente
10 volúmenes de columna de 2 mM ácido acético/1 mM glicina, 20
\muM CuSO_{4}, 6 M urea (pH aproximado 4,8) para quitar las
proteínas contaminantes y las isoformas de eritropoietina que
contienen menos de aproximadamente 7 residuos de ácido siálico. Las
isoformas que contienen de 8 a 12 ácidos siálicos aproximadamente
se eluyen de la columna utilizando un gradiente que comienza
aproximadamente en 2 mM ácido acético en 6 M urea/1 mM
glicina/20 \mum CuSO_{4} y llega hasta 40 mM ácido acético/6
M urea/1 mM glicina, 20 \muM CuSO_{4} (pH aproximado 4).
El volumen total del gradiente es de aproximadamente 40 volúmenes
de columna y se recogen fracciones de aproximadamente 1 volumen de
columna cada una en recipientes que contienen 1 volumen de tampón
Tris suficiente para llevar al pH a 6-8,5, con el
fin de evitar la exposición durante largo tiempo de las fracciones
recogidas a un pH bajo. Se someten partes de las fracciones a
concentración isoeléctrica analítica para controlar y seguir la
separación. La fig. 4 muestra la separación de isoformas
8-11 que se puede realizar con este procedimiento.
Las isoformas 12-14 que permanecen unidas a la
columna al final del gradiente se eluyen lavando con un tampón que
consta de 10 mM Tris-HCl, 140 mM NaCl, 20 \muM
CuSO_{4} (pH 7,0). Las isoformas (separadas durante el gradiente
o eluidas por la solución de cloruro sódico) se liberan de proteínas
contaminantes por cromatografía de fase inversa seguida de
cromatografía por filtración de gel tal como se describe en el ej.
2 de Lai et al.
Claims (21)
1. Método de preparación de una isoforma de
eritropoietina, biológicamente activa, método que comprende el
aislamiento de una isoforma de eritropoietina biológicamente activa
que tiene un solo punto isoeléctrico y un número específico de
ácidos siálicos por molécula de eritropoietina, número que se elige
dentro del grupo formado por
1 a 14.
1 a 14.
2. Método según la reivindicación 1, en el que la
citada isoforma es el producto de la expresión de una secuencia de
ADN exógena en una célula anfitriona eucariótica no humana.
3. Método según la reivindicación 1, en el que la
citada isoforma comprende eritropoietina que tiene la secuencia de
amino ácidos de la eritropoietina humana 1-165 ó
1-166.
4. Método según la reivindicación 1, en el que la
citada isoforma tiene 14 ácidos siálicos por molécula de
eritropoietina.
5. Método según la reivindicación 1, en el que la
citada isoforma tiene 13 ácidos siálicos por molécula de
eritropoietina.
6. Método según la reivindicación 1, en el que la
citada isoforma tiene 10 ácidos siálicos por molécula de
eritropoietina.
7. Método según la reivindicación 2, en el que la
citada célula anfitriona eucariótica es una célula CHO.
8. Método de preparación de una composición
farmacéutica, método que comprende la combinación de una cantidad
terapéuticamente eficaz de una isoforma de eritropoietina,
preparada según la reivindicación 1, con un diluyente, adyuvante o
vehículo farmacéuticamente aceptable.
9. Método de preparación de eritropoietina, que
consiste esencialmente en preparar moléculas de eritropoietina
biológicamente activas que tienen un número idéntico de ácidos
siálicos por molécula, eligiéndose dicho número dentro del grupo
formado por 1 a 14.
10. Método según la reivindicación 9, en el que
hay 14 ácidos siálicos por molécula de eritropoietina.
11. Método según la reivindicación 9, en el que
hay 13 ácidos siálicos por molécula de eritropoietina.
12. Método según la reivindicación 9, en el que
hay 10 ácidos siálicos por molécula de eritropoietina.
13. Método según la reivindicación 9, en el que
dicha molécula es el producto de la expresión de una secuencia de
ADN exógena en una célula anfitriona eucariótica no humana.
14. Método de preparación de una composición
farmacéutica, método que comprende la combinación de una cantidad
terapéuticamente eficaz de eritropoietina, preparada según el
método de la reivindicación 9, con un diluyente, adyuvante o
vehículo farmacéuticamente aceptable.
15. Método de preparación de una isoforma de
eritropoietina según la reivindicación 1, que comprende las etapas
siguientes: someter una eritropoietina purificada a una
concentración isoeléctrica preparativa y eluir una sola isoforma
del gel.
16. Método de preparación de una mezcla de
isoformas de eritropoietina que tienen un número predeterminado de
ácidos siálicos por molécula, siendo dicho número superior a 11, en
el que se somete material que contiene eritropoietina a
cromatografía de intercambio iónico.
17. Método de preparación de una mezcla de
isoformas de eritropoietina que tiene un número predeterminado de
ácidos siálicos por molécula, siendo dicho número superior a 11, en
el que se somete un material que contiene eritropoietina a
concentración cromatográfica.
18. Método de obtención de una composición de
eritropoietina que tiene un número predeterminado de ácidos
siálicos por molécula, que comprende la preparación de una mezcla
de dos o más isoformas de eritropoietina, preparadas según el
método de la reivindicación 1, en el que dicha mezcla consta
esencialmente de por lo menos dos isoformas, que tienen menos de 12
ácidos siálicos por molécula, o donde dicha mezcla consta
esencialmente de isoformas de eritropoietina que tienen 9, 10 y 11
ácidos siálicos por molécula, o donde dicha mezcla consta
esencialmente de por lo menos dos isoformas que tienen más de 11
ácidos siálicos por molécula.
19. Método de la reivindicación 18, en el que
dicha mezcla consta esencialmente de isoformas de eritropoietina
que tienen 13 y 14 ácidos siálicos por molécula.
20. Método según la reivindicación 18, que se usa
en un método para aumentar el nivel de hematocrito en
mamíferos.
21. Método según la reivindicación 19, en el que
dicha eritropoietina tiene la secuencia de amino ácidos de la
eritropoietina humana.
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