BRPI0516105B1 - material de implante consistindo em fosfato de cálcio poroso ou colágeno e fosfato de cálcio poroso, material de implante consistindo em aloenxerto ou colágeno e aloenxerto, método de preparação dos mesmos, uso de fosfato de cálcio poroso ou colágeno e fosfato de cálcio poroso na preparação do referido material de implante e uso de aloenxerto ou colágeno e aloenxerto na preparação do referido material de implante - Google Patents

material de implante consistindo em fosfato de cálcio poroso ou colágeno e fosfato de cálcio poroso, material de implante consistindo em aloenxerto ou colágeno e aloenxerto, método de preparação dos mesmos, uso de fosfato de cálcio poroso ou colágeno e fosfato de cálcio poroso na preparação do referido material de implante e uso de aloenxerto ou colágeno e aloenxerto na preparação do referido material de implante Download PDF

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BRPI0516105B1
BRPI0516105B1 BRPI0516105A BRPI0516105A BRPI0516105B1 BR PI0516105 B1 BRPI0516105 B1 BR PI0516105B1 BR PI0516105 A BRPI0516105 A BR PI0516105A BR PI0516105 A BRPI0516105 A BR PI0516105A BR PI0516105 B1 BRPI0516105 B1 BR PI0516105B1
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BR
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pdgf
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calcium phosphate
bone
allograft
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BRPI0516105A
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Samuel E Lynch
Original Assignee
Biomimetic Therapeutics Inc
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Publication date
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Abstract

composições de fator de crescimento derivado de plaqueta e métodos de uso destas. a presente invenção refere-se a um método para promover o crescimento de osso, periodôntio, ligamento ou cartilagem em um mamífero aplicando-se ao osso, periodôntio, ligamento ou cartilagem uma composição que compreende fator de crescimento derivado de plaqueta em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 mg/ml a cerca de 1,0 mg/ml em um veículo líquido farmaceuticamente aceitável e um veículo sólido farmaceuticamente aceitável.

Description

Relatório Descritivo da Patente de Invenção para "MATERIAL DE IMPLANTE CONSISTINDO EM FOSFATO DE CÁLCIO POROSO OU COLÁGENO E FOSFATO DE CÁLCIO POROSO, MATERIAL DE IMPLANTE CONSISTINDO EM ALOENXERTO OU COLÁGENO E ALOENXERTO, MÉTODO DE PREPARAÇÃO DOS MESMOS, USO DE FOSFATO DE CÁLCIO POROSO OU COLÁGENO E FOSFATO DE CÁLCIO POROSO NA PREPARAÇÃO DO REFERIDO MATERIAL DE IMPLANTE E USO DE ALOENXERTO OU COLÁGENO E ALOENXERTO NA PREPARAÇÃO DO REFERIDO MATERIAL DE IMPLANTE". Campo da Invenção A presente refere-se à cicatrização de tecidos ósseos e/ou conectivos. Antecedentes da Invenção Os fatores de crescimento são proteínas que ligam-se a receptores sobre a superfície celular, com o resultado primário de ativação da proliferação e/ou diferenciação celular. Muitos fatores de crescimento são bastante versáteis, estimulando a divisão celular em numerosos tipos celulares diferentes; enquanto outros são específicos para um tipo celular particular. Exemplos de fatores de crescimento incluem fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF), fatores de crescimento tipo insulina IGF-I e II), fator beta de crescimento por transformação (TGF-/3), fator de crescimento epidérmico (EGF), e fator de crescimento de fibroblasto (FGF). PDGF é uma proteína estável ao aquecimento, cati-ônica, encontrada em uma variedade de tipos celulares, incluindo os grânulos de plaque-tas circulantes, células de músculo liso vascular, células endoteliais, macrófago, e cerati-nócitos, e é conhecido estimular a síntese de proteína in vitro e produção de colágeno por fibroblastos. Também é conhecido agir como um mitógeno in vitro e agente quimbtático para fibroblastos, células de músculo liso, osteoblastos, e células gliais. PDGF-BB recombinante humano (rhPDGF-BB) foi mostrado estimular a cicatrização de ferimento e regeneração óssea tanto em animais quanto em seres humanos. É aprovado tanto nos Estados Unidos quanto na Europa para uso humano em aplicações tópicas para acelerar a cicatrização de feridas crônicas do pé de diabético. hPDGF-BB recombinante também foi mostrado ser eficaz ou sozinho ou em combinação com outros fatores de crescimento por melhorar regeneração perioden-tal, isto é, recrescimento ósseo, cimento e ligamento em tomo dos dentes (veja, por exemplo, a Patente U. S. n° 5.124.316, incorporado aqui por referência).
Sumário da Invenção Foi demonstrado que uma baixa dose de rhPDGF (~ 0,1 a 1,0 mg/ml_) promove o reparo de osso, periodôntio, ligamento, e cartilagem. Uma baixa quantidade de rhPDGF pode ser adsorvida em β-TCP, que pode ser implantado no sítio de reparo, de modo que o rhPDGF seja liberado in vivo. A adição de rhPDGF a β-TCP foi mostrada realçar a proliferação e ligação de célula de osteoblasto em comparação a β-TCP não tratada.
Em um primeiro aspecto, a invenção caracteriza um método para promover osso, periodôntio, ligamento, crescimento de cartilagem de ou em um mamífero, por exemplo, um ser humano, administrando um implante de material que contém fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) em uma concentração menor do que cerca de 1,0 mg/ml, tal que o material de implante promova o crescimento do osso, periodôntio, ligamento ou cartilagem. Em uma modalidade, o PDGF é administrado em uma quantidade menor do que ou igual a 0,3 mg/ml. Em outra modalidade o PDGF é administrado em uma quantidade na faixa de cerca de 0,1 a cerca 1,0 mg/ml. Em diversas modalidades, o PDGF é administrado em uma quantidade entre cerca de 0,2 a cerca de 0,75 mg/ml, cerca de 0,25 a cerca 0,6 mg/ml, e cerca de 0,25 a cerca 0,5 mg/ml. Em uma modalidade, o PDGF é administrado em uma quantidade de cerca de 0,1 mg/ml, 0,3 mg/ml ou 1,0 mg/ml, preferivelmente 0,3 mg/mL. Em outra modalidade, o PDGF é parcialmente ou substancialmente purificado. Em ainda uma outra modalidade, o PDGF é isolado ou purificado de outros contaminantes. Em uma outra modalidade, o PDGF é liberado do material de implante em administração em uma taxa média de 0,3 mg/dia. Em outra modalidade, o PDGF é liberado do material de implante em administração em uma taxa média de 300 pg/dia. Em ainda outras modalidades, o PDGF é liberado do material de implante em uma taxa menor do que 100 pg/dia, menor do que 50 pg/dia, menor do que 10 pg/dia ou menor do que 1 pg/dia. Preferivelmente, o PDGF é liberado durante alguns dias, por exemplo, 1,2, 5, 10,15, 20 ou 25 dias ou até 28 dias ou mais.
Um segundo aspecto da invenção caracteriza um método para promover osso, periodôntio, ligamento ou crescimento de cartilagem em um mamífero, por exemplo, um humano, administrando um material de implante que contém uma quantidade de fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) menor do que cerca de 1,0 mg/ml e um veículo farmaceuticamente aceitável tal que o material de implante promova o crescimento do osso, pe-riodôntio, ligamento ou cartilagem, e que permite o osso, periodôntio, ligamento, cartilagem, crescer. Preferivelmente, o PDGF é igual a ou menor do que cerca de 0,3 mg/ml. Em uma modalidade, o PDGF é administrado em uma faixa de cerca de 0,1 a 1,0 mg/ml. Em outras modalidades, a quantidade de PDGF é de cerca de 0,1 mg/ml, 0,3 mg/ml ou 1,0 mg/ml, preferivelmente 0,3 mg/mL. Em outra modalidade, o PDGF é parcialmente ou substancialmente purificado. Em contudo uma outra modalidade, o PDGF é isolado ou purificado de outros contaminantes. Antes de administrar o material de implante ao mamífero, o método pode adicionalmente incluir a etapa de produção de uma retalho cirúrgico de pele para expor o osso, periodôntio, ligamento, cartilagem, e em seguida à etapa de administração, substituir o retalho. Em contudo outra modalidade, depois de produzir o retalho cirúrgico, porém antes de administrar o material de implante ao osso, periodôntio, ligamento, cartilagem, o método pode também incluir a etapa de aplainar o osso ou periodôntio para remover a matéria orgânica do osso ou periodôntio. Em contudo outra modalidade, o método promove o crescimento de osso, periodontium, ligamento ou cartilagem danificado ou doente. Em contudo outra modalidade, o método promove o crescimento de osso em locais onde nova formação de osso é requerida como resultado de intervenções cirúrgicas, tal como, por exemplo, extração de dente, aumento de sulco, enxerto estético, e levantamento de seio.
Um terceiro aspecto da invenção caracteriza um material de implante para promover o crescimento de osso, periodôntio, ligamento, cartilagem em um mamífero, por exemplo, um humano. O material de implante inclui um veículo farmaceuticamente aceitável (por exemplo, aglutinante bio-compatível de aglutinante de um, um agente de substituição de osso, um líquido ou um gel) e fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) que está presente em uma concentração menor do que cerca de 1,0 mg/mL. Pre- ferivelmente, o PDGF está presente no material de implante em uma concentração igual a ou menor do que cerca de 0,3 mg/ml. Em uma modalidade, o PDGF é administrado em uma faixa de cerca de 0,1 a 1,0 mg/ml. Em outras modalidades, a quantidade de PDGF é de cerca de 0,1 mg/ml, 0,3 mg/ml ou 1,0 mg/ml, preferivelmente 0,3 mg/mL. Em uma modalidade, o veículo farmaceuticamente aceitável do material de implante inclui um andaime ou matriz que consiste em um aglutinante biocompatível (por exemplo, car-boximetilceiulose) ou um agente de substituição de osso (/3-TCP) que é capaz de absorver uma solução que inclui PDGF (por exemplo, uma solução que contém PDGF em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 mg/mL a cerca 1,0 mg/mL). Em outra modalidade, o veículo farmaceuticamente aceitável é capaz de absorver uma quantidade da solução de PDGF que é igual a pelo menos cerca de 25% de seu próprio peso. Em outras modalidades, o veículo farmaceuticamente aceitável é capaz de absorver uma quantia da solução de PDGF que é igual a pelo menos cerca de 50%, 75%, 100%, 200%, 250% ou 300% ou seu próprio peso. Em uma modalidade, o PDGF é absorvido pelo veículo farmaceuticamente aceitável do material de implante embebendo o veículo farmaceuticamente aceitável em uma solução contendo PDGF. Preferivelmente, o PDGF está presente na solução em uma concentração menor do que cerca de 1,0 mg/ml_. Em outra modalidade, o PDGF está presente na solução em uma concentração igual a ou menor do que cerca de 0,3 mg/ml. Em outra modalidade, o PDGF está presente no solução em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 a 1,0 mg/ml. Contudo em outras modalidades, o PDGF está presente na solução em uma quantidade de cerca de 0,1 mg/ml, 0,3 mg/ml ou 1,0 mg/ml, preferivelmente 0,3 mg/mL. Em outra modalidade, o PDGF é parcialmente ou substancialmente purificado. Contudo, em uma outra modalidade, o PDGF é isolado ou purificado de outros contaminantes.
Um quarto aspecto da invenção caracteriza um método por preparar para um material de implante para promover o crescimento de osso, periodôntio, ligamento ou cartilagem em um mamífero, por exemplo, um humano. O método inclui a etapa de combinar o fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) parcialmente purificado ou purificado em uma quantidade menor do que cerca de 1,0 mg/mL com uma substância veículo farma-ceuticamente aceitável . Preferivelmente, o PDGF é combinado com uma substância veículo farmaceuticamente aceitável em uma concentração aceitável igual a ou menor do que cerca de 0,3 mg/ml. Em uma modalidade, o PDGF é combinado com uma substância veículo farmaceuticamente aceitável em uma quantidade na faixa de cerca de 0,1 a 1,0 mg/ml em uma modalidade. Em outras modalidades, o PDGF é misturado na quantidade de 0,1 mg/ml, 0,3 mg/ml ou 1,0 mg/ml. Em outra modalidade, PDGF está misturado na quantidade de 0,3 mg/ml. Em ainda outra modalidade, o PDGF é absorvido pelo veículo farmaceuticamente aceitável para produzir o material de implante.
Um quinto aspecto da invenção caracteriza um frasconete que tem fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 mg/ml_ a cerca 1,0 mg/ml_ em um líquido farmaceuticamente aceitável. Em uma modalidade deste aspecto da invenção, o líquido é tampão de acetato de sódio estéril. Em outra modalidade, o frasconete contém PDGF em uma concentração de cerca de 0,3 mg/mL. Em ainda outra modalidade preferida, o PDGF é PDGF-BB. Em ainda outras modalidades, o PDGF é estável no tampão de acetato de sódio durante pelo menos cerca de 12 meses, preferivelmente pelo menos cerca de 18 meses, mais preferivelmente pelo menos cerca de 24 meses, e o mais preferivelmente pelo menos cerca de 36 meses quando.armazenado em uma temperatura na faixa de cerca de 2°C a 80°C.
Um sexto aspecto da invenção caracteriza um material de implante que inclui um fosfato de cálcio poroso tendo absorvido nele um líquido que contém fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 mg/mL a cerca de 1,0 mg/mL. Em diversas modalidades, a concentração PDGF é de cerca de 0,3 mg/mL, o fosfato de cálcio é selecionado de fosfato de tricálcio, hidroxiapatita, hidroxiapatita pouco cristalina, fosfato de cálcio de amorfo, metafosfato de cálcio, diidrato de fosfato de dicálcio, fosfato de heptacálcio, diidrato de pirofosfato de cál- cio, pirofosfato de cálcio, e fosfato de octacálcio, e o PDGF é fornecido em um líquido estéril, por exemplo, tampão de acetato de sódio.
Um sétimo aspecto da invenção caracteriza um método de preparar um material de implante saturando um material de fosfato de cálcio em um líquido estéril que inclui fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 mg/mL um de de cerca 1,0 mg/mL. Em diversas modalidades, a concentração PDGF é de cerca de 0,3 mg/mL, e o fosfato de cálcio é selecionado de fosfato de tricál-cio, hidroxiapatita, hidroxiapatita pouco cristalina, fosfato de cálcio de amor-fo, metafosfato de cálcio, diidrato de fosfato de dicálcio, fosfato de heptacál-cio, diidrato de pirofosfato de cálcio, pirofosfato de cálcio, e fosfato octacálcio.
Em uma modalidade de todos os aspectos da invenção, o PDGF inclui homo- e heterodímeros de PDGF, por exemplo, PDGF-AA, PDGF-BB, PDGF-AB, PDGF-CC, e PDGF-DD, combinações e derivados destes.
Em uma modalidade de todos os aspectos da invenção, a substância veículo farmaceuticamente aceitável do material de implante é ou adicionalmente inclui um ou mais do seguinte: um aglutinante biocompatível (por exemplo, um polímero natural ou sintético), um agente de substituição de osso, um líquido, e um gel. Em outra modalidade preferida, o material de implante inclui PDGF presente em um veículo líquido farmaceuticamente aceitável que é adsorvido por um veículo sólido farmaceuticamente aceitável.
Em outra modalidade de todos os aspectos da invenção, o material de implante é preparado combinando-se PDGF isolado, parcialmente purificado, substancialmente purificado ou purificado em uma quantidade na faixa de 0,1 a 1,0 mg/ml, mais preferivelmente 0,1 mg/ml, 0,3 mg/ml ou 1,0 mg/ml, mais preferivelmente 0,3 mg/ml ou até mesmo menos de 0,1 mg/ml, com uma substância veículo farmaceuticamente aceitável, por exemplo, a-glutinante biocompatível, tal como um polímero natural ou sintético (por e-xemplo, colágeno, ácido poliglicólico, e ácido polilático), um agente de substituição de osso (por exemplo, um fosfato de cálcio (por exemplo, fosfato de tricálcio ou hidroxiapatita), sulfato de cálcio ou osso desmineralizado (por exemplo, osso gradeado ou cortical secado por congelamento desmineralizado) ou um gel ou líquido comercialmente disponível (isto é, um ou líquido viscoso ou inerte).
Em várias modalidades, a substância veículo do material de implante é ou adicionalmente inclui, um ou mais aglutinantes biocompatíveis. Um aglutinante biocompatível é um agente que produz ou promove a coesão entre as substâncias combinadas. Exemplos não-limitantes de aglutinantes biocompatíveis adequados incluem polímeros selecionados de polissacarí-deosm ácidos nucléicos, carboidratos, proteínas, polipeptídeos, poli(ácidos de α-hidróxi), poli(lactonas) poli(aminoácidos), poli(anidridos), po-li(ortoésteres), poli(Anidrido-co-imidas), poli(ortocarbonatos), poli(alcanoatos de a-hidróxi), poli(dioxanonas), poli(fosfoésteres), ácido polilático, poli(L-lactídeo) (PLGA), poli(L-lactídeo-co-D, L-lactídeo), poli(carbonato de D,L-lactídeo-co-trimetileno), ácido poliglicólico, poliidroxibutirato (PHB), poli(s-caprolactona), poli( δ-valerolactona), poli( γ-butirolactona), poli(caprolactona), ácido poliacrílico, ácido policarboxílico, poli(cloridrato de alilamina), po-li(cloreto de dialildimetilamônio), poli(etilenoimina), fumarato de polipropileno, álcool polivinílico, polivinilpirrolidona, polietileno, polimetilmetacrilato, fibras de carbono, poli(etileno glicol), poli(etileno oxido), poli(vinil álcool), po-li(vinilpirrolidona), poli(etiloxazolina), copolímeros de bloco de poli(etileno óxido)-co-poli(propileno óxido), poli(etileno tereftalato)poliamida, e copolímeros e misturas destes. Aglutinantes adicionais incluem ácido algínico, goma arábica, goma guar, goma xantam, gelatina,quitina, quitosana, acetato de quitosana, lactato de quitosana, sulfato de condroitina, quitosana de Ν,Ο-carboximetila, uma dextrana (por exemplo, a-ciclodextrina, β-ciclodextrina, γ-ciclodextrina ou sulfato de dextrana de sódio), cola de fibrina, glicerol, ácido hialurônico, hialuronato de sódio, uma celulose (por exemplo, metilcelulose, carbóxi metilcelulose, hidroxipropil metilcelulose ou hidroxietil celulose), uma glucosamina, um proteoglicano, um amido (por exemplo, amido de hidroxieti-la ou amido solúvel) ácido lático, um plurônicos, glicerofosfato de sódio, co-lágeno, glicogênio, uma ceratina, seda, e derivados e misturas destes. Em algumas modalidades, o aglutinante biocompatível é solúvel em água. Um aglutinante solúvel em água dissolve do material de implante imediatamente após seu implante in vivo, desse modo introduzindo macroporosidade no material de implante. Esta macroporosidade aumenta a osteocondutividade do material de implante realçando o acesso e, Conseqüentemente, a atividade de remodelagem dos osteoclastos e osteoblastos no sítio de implante. O aglutinante biocompatível pode ser adicionado ao material de implante em quantidades variáveis e em uma variedade de estágios durante a preparação da composição. Aqueles versados na técnica serão capazes de determinar a quantidade de aglutinante e o método de inclusão requeridos para uma determinada aplicação.
Em uma modalidade, a substâncias veículo é ou inclui um líquido selecionado de água, um tampão, e um meio de cultura celular. O líquido pode ser usado em qualquer faixa de pH, porém mais freqüentemente será usado na faixa de pH 5,0 a pH 8,0. Em uma modalidade, o pH será compatível com a estabilidade prolongada e eficácia do PDGF presente no material de implante ou com a estabilidade prolongada e eficácia de outro agente biologicamente ativo desejado. Na maioria das modalidades, o pH do líquido será na faixa de pH 5,5 a pH 7,4. Aglutinantes adequados incluem, porém não estão limitados a, carbonatos, fosfatos (por exemplo, salina tamponadas por Fosfato), e tampões orgânicos tais como Tris, HEPES, e MOPS. Mais freqüentemente, o tampão será selecionado quanto a sua biocompatibilidade com os tecidos hospedeiros e sua compatibilidade com o agente biologicamente ativo. Para a maioria das aplicações em que os ácidos nucléicos, peptídeos ou antibióticos são incluídos no material de implante, uma salina tamponada por fosfato simples bastará.
Em outra modalidade de todos os aspectos da invenção, a substâncias veículo do material de implante é ou adicionalmente inclui, um ou mais agentes de substituição de osso. Um agente de substituição de osso é aquele que pode ser empregado para permanentemente ou temporariamente substituir o osso. Em seguida ao implante, o agente de substituição do osso pode ser mantido pelo corpo ou ele pode ser reabsorvido pelo corpo e substituído com o osso. Agente de substituição de osso exemplar inclui, por exemplo, um fosfato de cálcio (por exemplo, fosfato de tricálcio (por exemplo, β-TCP), hidroxiapatita, hidroxiapatita pouco cristalina, fosfato de cálcio amorfo, metafosfato de cálcio, diidrato de fosfato de dicálcio, fosfato de hep-tacálcio, diidrato de pirofosfato de cálcio, pirofosfato de cálcio, e fosfato de octacálcio), sulfato de cálcio ou osso desmineralizado (por exemplo, osso gradeado ou cortical seco por congelamento desmineralizado)). Em uma modalidade, a substância veículo é biorreabsorvível. Em outra modalidade, o agente de substituição óssea é fornecido como uma matriz de partículas de tamanho mícron ou submícron, por exemplo, partículas de tamanho nano. As partículas podem ser na faixa de cerca de 100 pm a cerca de 5000 pm em tamanho, mais preferivelmente na faixa de cerca de 200 pm a cerca de 3000 pm, e mais preferivelmente na faixa de cerca de 250 pm a cerca de 2000 pm ou as partículas podem ser na faixa de cerca de 1 nm a cerca de 1000 nm, preferivelmente menos do que cerca de 500 nm, e mais preferivelmente menos do que cerca de 250 nm. Em outra modalidade, o agente de substituição de osso uma composição porosa. A porosidade da composição visto que ela facilita a migração e infiltração celular na composição de modo que as células possam secretar a matriz óssea extracelular. Ela também fornece acesso para vascularização. A porosidade também fornece uma área de superfície elevada para reabsorção realçada e liberação de substâncias ativas, bem como interação de matriz celular aumentada. Preferivelmente, a composição tem uma porosidade maior do que 40%, mais preferivelmente maior que 65%, e o mais preferido maior do que 90%. A composição pode ser fornecida em uma forma adequada para implante (por exemplo, uma esfera, um cilindro ou um bloco) ou que possa ser classificado por tamanho e modelado antes do uso. Em uma modalidade preferida, o a-gente de substituição de osso é um fosfato de cálcio (por exemplo, β-TCP). O agente de substituição de osso pode também ser fornecido como uma pasta moldável, fluível ou mastique. Preferivelmente, o agente de substituição de osso é uma pasta de fosfato de cálcio que auto-endurece para formar um fosfato de cálcio endurecido antes ou após o implante in vi- vo. O componente de fosfato de cálcio da invenção pode ser qualquer material de fosfato de cálcio biocompatível conhecido na técnica. O material de fosfato de cálcio pode ser produzidos por qualquer um de uma variedade de métodos e empregando quaisquer componentes de partida adequados. Por exemplo, o material de fosfato de cálcio pode incluir fosfato de cálcio apatíti-co, amorfo. O material de fosfato de cálcio pode ser produzidos por reação de base-ácido em estado sólido de reagentes de fosfato de cálcio cristalino para formar sólidos de hidroxiapatita cristalinos. Outros métodos de preparar materiais de fosfato de cálcio são conhecidos na arte, alguns dos quais são descritos abaixo. O material de fosfato de cálcio pode ser hidroxiapatita (HA) ou fosfato de cálcio apatítico pouco cristalino (PCA). O material de PCA é descrito nos pedidos de Patente U. S. nos 5.650.176, 5.783.217, 6.027.742, 6.214.368, 6.287.341, 6.331.312, e 6.541.037 todos os quais são incorporados aqui por referência. HA é descrito, por exemplo, nas Patentes U. S. noS Re. 33.221 e Re. 33.161. Estas patentes ensinam a preparação de composições de remineralização de fosfato de cálcio e de um material veículo de hidroxiapatita gradualmente reabsorvível, de não-cerâmica, finamente cristalino com base na mesma composição de fosfato de cálcio. Um sistema de fosfato de cálcio similar, que consiste em fosfato de tetracálcio (TTCP) e fosfato de monocálcio (MCP) ou sua forma de monoidrato (MCPM), é descrito nos Patentes U. S. noS 5.053.212 e 5.129.905. Este material de fosfato de cálcio é produzido por reação de base de ácido em estado sólido de reagentes de fosfato de cálcio cristalinos para formar sólidos de hidroxiapatita cristalinos.
Materiais de HA cristalinos (geralmente referidos como dahllite) podem ser preparados de modo que eles sejam fluíveis, moldáveis, e capazes de endurecer in situ (veja Patente U. S. n° 5.962.028). Estes materiais de HA (geralmente referidos como hidroxiapatita carbonatada) podem ser formados combinando os reagentes com um líquido não-aquoso para fornecer uma mistura substancialmente uniforme, moldando a mistura como a-propriado, e deixando a mistura endurecer na presença de água (por exem- pio, antes ou após o implante). Durante o endurecimento, a mistura cristaliza em uma estrutura de apatítica sólida e essencialmente monolítica.
Os reagentes geralmente consistirão em uma fonte de fosfato, por exemplo, ácido fosfórico ou sais de fosfato, substancialmente livres de água, um metal alcalino terroso, particularmente cálcio, fonte, núcleos opcionalmente cristalinos, particularmente hidroxiapatita ou cristais de fosfato de cálcio, carbonato de cálcio, e um lubrificante fisiologicamente aceitável, tal como quaisquer dos líquidos não-aquosos descrito aqui. Os ingredientes secos podem ser pré-preparados como uma mistura e subseqüentemente combinados ou com os ingredientes líquidos não-aquosos sob condições onde ocorre mistura substancialmente uniforme.
Material de fosfato de cálcio é caracterizado por sua capacidade de reabsorção, biocompatibilidade, e sua cristalinidade mínima. Seu caráter cristalino é substancialmente o mesmo do osso natural. Preferivelmente, o material de fosfato de cálcio endurece em menos do que cinco horas, e substancialmente endurece em cerca de uma a cinco horas, sob condições fisiológicas. Preferivelmente, o material é substancialmente endurecido dentro de cerca de 10 a 30 minutos. A taxa de endurecimento sob condições fisiológicas, pode ser variada de acordo com a necessidade terapêutica modificando alguns parâmetros simples como descrito na Patente U. S. n° 6.027.742, que é incorporado aqui por referência.
Em uma modalidade, o material de fosfato de cálcio biorreabsor-vível resultante será "deficiente de cálcio", com uma relação molar de cálcio para fosfato menor do que cerca de 1,6 quando comparado ao valor este-quiométricos ideal de aproximadamente 1,67 para hidroxiapatita.
Os fosfatos de cálcio desejáveis são capazes de endurecer em um ambiente duro, em ou em torno da temperatura corporal em menos do que 5 horas e preferivelmente dentro de 10 a 30 minutos. Os materiais desejáveis são aqueles que, quando implantados como um pélete de 1 a 5 g, são pelo menos 80% reabsorvidos dentro de um ano. Preferivelmente, o material pode ser totalmente reabsorvido.
Em diversas modalidades de todos os aspectos da invenção, o material de implante adicionalmente pode incluir um ou mais agentes biologicamente ativos. Os agentes biologicamente ativos que podem ser incorporados nos materiais de implante da invenção incluem, sem limitação, moléculas orgânicas, materiais inorgânicos, proteínas, peptídeos, ácidos nucléi-cos (por exemplo, fragmentos de gene, sequências reguladoras de gene, e moléculas anti-sentido), nucleoproteínas, polissacarídeos, glicoproteínas, e lipoproteínas. Classes de compostos biologicamente ativos que podem ser incorporados nos materiais de implante da invenção incluem, sem limitação, agentes anticâncer, antibióticos, analgésicos, agentes antiinflamatórios, imu-nossupressores, inibidores de enzima, anti-histaminas, anticonvulsivantes, hormônios, relaxantes musculares, antiespasmódicos, agentes oftálmicos, prostaglandinas, antidepressivos, substâncias antipsicóticas, fatores tráficos, proteínas osteoindutivas, fatores de crescimento e vacinas.
Agentes anticâncer incluem agentes de alquilação, agentes de platina, antimetabólitos, inibidores de topoisomerase, antibióticos antitumor, agentes antimitóticos, inibidores de aromatase, inibidores de timidilato síntese, antagonistas de DNA, inibidores de farnesiltransferase, inibidores de bomba, inibidores de acetiltransferase de histona, inibidores de metalopro-teinase, inibidores de ribonucleosídeo redutase, agonistas/antagonistas de TNF alfa, antagonistas de receptor de endotelina A, agonistas de receptor de ácido retinóico, imunomoduladores, agentes hormonais e anti-hormonais, agentes fotodinâmicos, e inibidores de tirosina cinase.
Qualquer dos agentes biologicamente ativos listados na Tabela 1 pode ser empregado.
Tabela 1.
Os antibióticos incluem aminoglicosídeos (por exemplo, genta-micina, tobramicina, netilmicina, estreptomicina, amicacina, neomicina), baci-tracina, corbapenems (por exemplo, imipenem/cislastatina), cefalosporinas, colistina, metecamina, monobactams (por exemplo, aztreonam), penicilinase (por exemplo, penicilina G, penicilina V, meticilina, natcilina, oxacilina, cloxa-cilina, dicloxacilina, ampicilina, amoxicilina, carbenicilina, ticarcilina, piperaci-lina, mezlocilina, azlocilina), polimixina B, quinolonas, e vancomicina; e agentes bacteriostáticos, tais como cloranfenicol, clindanian, macrolídeos (por exemplo, eritromicina, azitromicina, claritromicina), lincomian, nitrofuran-toína, sulfonamidas, tetraciclinas (por exemplo, tetraciclina, doxiciclina, mi-nociclina, demeclocilina) e trimetoprim. São também incluídos metronidazol, fluoroquinolonas, e ritampina.
Inibidores de enzima são substâncias que inibem uma reação enzimática. Exemplos de inibidores de enzima incluem cloreto de edofônio, N-metilfisostigmina, brometo de neostigmina, sulfato de fisostigmina, tacrina, maleato de 1-hidróxi, iodotubercidina, p-bromotetramisol, cloridrato 10-(alfa-dietilaminopropionil)-fentiazina, cloreto de calmidazólio, hemicolínio-3, 3,5-dinitrocatecol, inibidor I de cinase de diacilglicerol, inibidor II de cinase de diacilglicero, 3-fenilpropargilamina, acetato de N6-monometil-L-arginina, car-bidopa, 3-hidroxibenzilidrazina, hidralazina, clorgilina, deprenila, hidroxilami-na, fosfato de iproniazid, 6-MeO-tetraidro-H-pirido-indol, nialamida, pargilina, quinacrina, semicarbazida, tranilcipromina, cloridrato de Ν,Ν-dietilaminoetil-2,2-difenilvalerato, 3-isobutii-1-metilxantna, papaverina, indometacind, cloridrato de 2-ciclooctil-2-hidroxietilamina, 2,3-dicloro-1-metilbenzilamina (DCMB), cloridrato de 8,9-dicloro-2,3,4,5-tetraidro-1H-2-benzazepina, p-aminoglutetimida, tartarato de p-aminoglutetimida, 3-iodotirosina, alfa-metiltirosina, acetazola-mida, diclorfenamida, 6-hidróxi-2-benzotiazolsulfonamida, e alopurinol.
Antihistaminas incluem pirilamina, clorfeniramina e tetraidrozoli-na, entre outros.
Agentes antiinflamatórios incluem corticosteróides, drogas antiin-flamatórias não esteroidais (por exemplo, aspirina, fenilbutazona, indometa-cina, sulindac, tolmetin, ibuprofeno, piroxicam, e fenamatos), acetamino- phen, fenacetina, sais de ouro, cloroquina, D-Penicilamina, colquicina de metotrexato, alopurinol, probenecid, e sulfinpirazona.
Relaxantes musculares incluem mefenesina, metocarbomal, clo-ridrato de ciclobenzaprina, cloridrato de triexilfenidila, levodopa/carbidopa, e biperiden.
Antiespasmódicos incluem atropina, escopolamina, oxifenônio, e papaverina.
Analgésicos incluem aspirina, fenilbutazona, idometacina, sulin-dac, tolmetic, ibuprofeno, piroxicam, fenamatos, acetaminofeno, fenacetina, sulfato de morfina, sulfato de codeína, meperidina, nalorfina, opióides (por exemplo, sulfato de codeína, citrato de fentanila, bitartarato de hidrocodona, loperamida, sulfato de morfina, noscapina, norcodeína, normorfina, tebaína, nor-binaltorfimina, burprenorfina, clornaltrexamina, funaltrexamiona, nalbufi-na, nalorfina, naloxona, naloxonazina, naltrexona e naltrindol), procaína, li-docaína, tetracaína e dibucaína.
Agentes oftálmicos incluem fluoresceína de sódio, rose Bengal, metacolina, adrenalina, cocaína, atropina, alfa-quimiotripsina, hialuronidase, betaxalol, pilocarpina, timolol, sais de timolol, e combinações destes.
Prostaglandinas são reconhecidos na técnica e são uma classe de ácidos graxos de hidróxi de cadeia longa, quimicamente relacionados, de ocorrência natural que têm uma variedade de efeitos biológicos.
Antidepressivos são substâncias capazes de prevenir ou aliviar a depressão. Exemplos de antidepressivos incluem imipramina, amitriptilina, nortriptilina, protriptilina, desipramina, amoxapina, doxepina, maprotilina, tra-nilcipromina, fenelzina e isocarboxazida.
Fatores de crescimento são fatores cuja presença continuada melhora a viabilidade ou longevidade de uma célula. Os fatores tráficos incluem, sem limitação, proteína de ativação de neutrófilo, proteína quimioa-traente de monócito, proteína inflamatória de macrófago, fator de plaqueta, proteína básica de plaqueta, e atividade de estimulação do crescimento de melanoma; fator de crescimento epidérmico, fator de crescimento por transformação (alfa), fator de crescimento de fibroblasto, fator de crescimento de célula endotelial derivada de plaqueta, fator de crescimento semelhantes à insulina (IGF, por exemplo, IGF-I ou IGF-II), fator neurotrófico de crescimento derivado de glial, fator neurotrófico ciliar, fator de crescimento de nervo, fator indutor de cartilagem/crescimento ósseo (alfa e beta), proteínas morfo-genéticas óssea (BMPs), interleucinas (por exemplo, inibidores de interleuci-na ou receptores de Interleucina, incluindo Interleucina 1 até Interleucina 10), interferons (por exemplo, interferon alfa, beta e gama), fatores hematopoiéti-cos, incluindo eritropoietina, fator de estimulação de colônia de granulócito, fator de estimulação de colônia de macrófago e fator de estimulação de colônia de macrófago-granulócido; fatores de necrose de tumor, fatores de crescimento por transformação (beta), incluindo, beta-1, beta-2, beta-3, fatores de crescimento por transformação (alfa), inibina, e ativina; e proteínas morfogenéticas óssea tais como OP-1, BMP-2 e BMP-7.
Os hormônios incluem estrogênios (por exemplo, estradiol, es-trona, estriol, dietilestibestrol, quinestrol, clorotrianiseno, estradiol de etinila, mestranol), antiestrogênios (por exemplo, clomifeno, tamoxifeno), progesti-nas (por exemplo, medroxiprogesterona, noretindrona, hidroxiprogesterona, norgestrel), antiprogestina (mifepristona), androgênios (por exemplo, cipiona-to de testosterone, fluoximesterona, danazol, testolactona), antiandrogênios (por exemplo, acetato de ciprosterona, flutamida), hormônios de tireóide (por exemplo, triiodotirona, tiroxina, propiltiouracila, metimazol, e iodixoda), e hormônios de pituitária (por exemplo, corticotropina, sumutotropina, oxitocina, e vasopressina). Hormônios são geralmente empregados em terapia de substituição de hormônio e/ou para os propósitos de controle de nascimento. Hormônios esteróides, tais como prednisona, são também empregados como imunossupressores e antiinflamatórios. O agente biologicamente ativo é também desejavelmente selecionado da família de proteínas conhecidas como a superfamília de proteínas dos fatores-beta de crescimento por transformação (TGF-β), que inclui as ativinas, inibinas, e proteínas morfogenéticas óssea (BMPs). Em uma modalidade, o agente ativo inclui pelo menos uma proteína selecionada da subclasse de proteínas conhecidas geralmente como BMPs, que foram des- critas terem atividade osteogênica, e outras atividades tipo crescimento e diferenciação. Estas BMPs incluem as proteínas BMP, BMP-2, BMP-3, BMP-4, BMP-5, BMP-6 e BMP-7, descritas por exemplo nas Patentes U. S. noS 5.108.922, 5.013.649, 5.116.738, 5.106.748, 5.187.076; e 5.141.905; BMP-8, descrita na publicação PCT WO 91/18098; e BMP-9, descrita na publicação PCT WO 93/00432, BMP-10, descrita no pedido PCT WO 94/26893, BMP-11, descrita no pedido PCT WO 94/26892 ou BMP-12 ou BMP-13, descrita no pedido PCT WO 95/16035, BMP14, BMP-15, descrita na Patente U. S. n° 5.635.372 ou BMP-16, descrita na Patente U. S. n° 5.965.403. Outras proteínas TGF-β que podem ser úteis como o agente ativo nas composições de fosfato de cálcio da invenção incluem Vgr-2, Jones e outros, Mol. Endocrinol. 6: 1961 (1992), e quaisquer dos fatores de crescimento e diferenciação (GDFs), incluindo aqueles descritos nos pedidos PCT WO 94/15965; WO 94/15949; WO 95/01801, WO 95/01802, WO 94/21681, WO 94/15966, WO 95/10539, WO 96/01845, WO 96/02559 e outros. Também úteis na invenção podem ser BIP, descrito na WO 94/01557, HP 00269, descrito na Publicação JP número: 7-250688, e MP52, descrito no pedido PCT WO 93/16099. As descrições de todos os pedidos acima são incorporadas aqui por referência. Um subgrupo de BMPs que pode ser usado na invenção inclui BMP-2, BMP-4, BMP-5, BMP-6, BMP-7, BMP-10, BMP-12, BMP-13, BMP-14, e MP52. O agente ativo é mais preferivelmente BMP-2, a seqüên-cia da qual é descrita na Patente U: S. n° 5.013.649, a descrição da qual é incorporado aqui por referência. Outros agentes osteogênicos conhecidos na técnica podem também ser empregados, tais como teriparatida (Forteo®), Chrysalin®, prostag landi na E2, proteína LIM, osteogenina ou matriz óssea desmineralizada (DBM), entre outros. O agente biologicamente ativo pode ser sintetizado quimicamen-te, recombinantemente produzidos ou purificado de uma fonte em que o a-gente biologicamente ativo é naturalmente encontrado. O agente ativo, se uma TGF-β, tal como BMPs (por exemplo, um heterodímero composto de um monômero cada de BMP-2 e BMP-6) ou com outros membros da super-família TGF-β, tal como activinas, inibinas e TGF-βΙ (por exemplo, um hete- rodímero composto de um monômero cada de uma BMP e um membro relacionado da superfamília TGF-β). Exemplos de tais proteínas heterodiméricas são descritos por exemplo no Pedido de Patente PCT Publicado WO 93/09229, a especificação do qual é incorporado aqui por referência.
Agentes biologicamente ativos adicionais incluem as proteínas Hedgehog, Frazzled, Chordin, Noggin, Cerberus, e Follistatina. Estas famílias de proteínas são geralmente descritas em Sasai e outro, Cell 79: 779-790 (1994) (Chordin); Publicação de Patente PCT WO 94/05800 (Noggin); e Fukui e outro, Devei. Biol. 159: 131 (1993) (Follistatina). As proteínas Hedgehog são descritas no WO 96/16668; WO 96/17924, e WO 95/18856. A família Frazzled de proteínas é uma família de proteínas recentemente descoberta com alta homologia ao domínio de ligação extracelular da família de proteína receptora conhecida como Frizzled. A família Frizzled de genes e proteínas é descrita em Wang e outro, J. Biol. Chem. 271: 4468-4476 (1996). O agente ativo pode também incluir outros receptores solúveis, tais como os receptores solúveis truncados descritos na publicação de patente PCT WO 95/07982. Dos ensinamentos de WO 95/07982, alguém versado na técnica reconhecerá que os receptores solúveis truncados podem ser preparados para numerosas outras proteínas receptoras. As publicações acima são incorporadas aqui por referência. A quantidade da proteína biologicamente ativa, por exemplo, uma proteína osteogênica, que é eficaz para estimular uma atividade desejada, por exemplo, atividade osteogênica aumentada de células progenitoras presentes ou infiltrantes ou outras, dependerá do tamanho e natureza do defeito que está sendo tratado, bem como o veículo que está sendo empregado. Geralmente, a quantidade de proteína a ser liberada é em uma faixa de cerca de 0,1 a cerca de 100 mg; preferivelmente cerca de 1 a cerca de 100 mg; mais preferivelmente cerca de 10 a cerca de 80 mg.
Os protocolos padrão e regimes para liberação dos agentes listados acima são conhecidos na técnica. Os agentes biologicamente ativos são introduzidos no material de implante em quantidades que permitem a liberação de uma dosagem apropriada do agente para o sítio de implante.
Na maioria dos casos, as dosagens são determinadas empregando-se normas conhecidas pelos práticos e aplicáveis ao agente particular em questão. A quantidade exemplar de agente biologicamente ativo a ser incluído no material de implante da invenção é provável depender de tais variáveis como o tipo e extensão da condição, o estado de saúde geral do paciente particular, a formulação do agente ativo, e a capacidade de biorreabsorção do veículo liberado usado. Experiências clínicas padrão podem ser empregadas para otimizar a dose e freqüência de dosagem para qualquer agente biologicamente ativo particular.
Em uma modalidade de todos os aspectos da invenção, a composição pode adicionalmente conter extratos de plaqueta autóloga ou medula óssea autóloga.
Em outra modalidade de todos os aspectos acima, o PDGF e/ou outros fatores de crescimento podem ser obtidas de fontes naturais, (por exemplo, plaquetas) ou mais preferivelmente, produzidos por tecnologia de DNA recombinante. Quando obtido de fontes naturais, o PDGF e/ou outros fatores de crescimento podem ser obtidas de um fluido biológico. Um fluido biológico inclui qualquer fluido tratado ou não tratado (incluindo uma suspensão) associada com organismos vivos, particularmente sangue, incluindo sangue total, sangue quente ou frio, e sangue armazenado ou fresco; sangue tratado, tal como sangue diluído com peto menos uma solução fisiológica, incluindo porém não limitado a salina, nutriente, e/ou soluções anticoagu-lantes; componentes sangüíneos, tais como concentrado de plaqueta (PC), plaquetas aferezadas, plasma rico em plaqueta (PRP), plasma pobre em plaqueta (PPP), plasma livre de plaqueta, plasma, soro, plasma congelado fresco (FFP), componentes obtidas de plasma, células vermelhas embaladas (PRC), camada leucocitária (BC); produtos de sangue derivados de sangue ou um componente de sangue ou derivado de medula óssea; células vermelhas separadas de plasma e ressuspensas em fluido fisiológico; e plaquetas separadas de plasma e ressuspensas em fluido fisiológico. O fluido biológico pode ter sido tratado para remover alguns dos leucócitos antes de ser processado de acordo com a invenção. Como aqui empregado, produto de san- gue ou fluido biológico refere-se aos componentes acima descritos, e a produtos de sangue ou fluidos biológicos similares obtidas por outros métodos e com propriedades similares. Em uma modalidade, o PDGF é obtido de plasma rico em plaqueta (PRP). A preparação de PRP é descrita, por exemplo, nas Patentes U. S. noS 6.649.072, 6.641.552, 6.613.566, 6.592.507, 6.558.307, 6.398.972, e 5.599.558, que são incorporadas aqui por referência.
Em uma modalidade de todos os aspectos da invenção, o material de implante libera PDGF no sítio de implante por uma duração de tempo maior do que pelo menos 1 dia. Em diversas modalidades, o material de implante libera PDGF no sítio de implante durante pelo menos 7, 14, 21 ou 28 dias. Preferivelmente, o material de implante libera PDGF no sítio de implante por um tempo entre cerca de 1 dia e 7, 14, 21 ou 28 dias. Em outra modalidade, o material de implante libera PDGF no local de implante por um tempo maior que cerca de um dia porém menor do que cerca de 14 dias.
Por "biorreabsorvível" entende-se a capacidade do material de implante ser reabsorvido ou remodelado in vivo. O processo de reabsorção envolve a degradação e eliminação do material de implante original através da ação dos fluidos corporais, enzimas ou células. O material reabsorvido pode ser empregado pelo hospedeiro na formação de novos tecidos ou podem ser de outra maneira reutilizados pelo hospedeiro ou podem ser excretados.
Por "fator de diferenciação" entende-se um polipeptídeo, incluindo uma cadeia de pelo menos 6 aminoácidos, que estimula a diferenciação de uma ou mais células alvo em células com potencial de formação de cartilagem ou osso.
Por "partícula de tamanho nanometro" entende-se uma partícula de tamanho submícron, geralmente definidos como uma partícula abaixo de 1000 nanômetros. Uma partícula de tamanho nanometro é um material de partícula sólido que está em um estado intermediário entre substâncias moleculares e macrons. Um nanometro é definidos como um bilhão de um metro (1 nanometro = 109 m). O material nanometro é conhecido como o pó, fibra, película ou bloco tendo tamanho de nanoescala.
Por "periodôntio" entende-se os tecidos que circundam e sustentam os dentes. O periodôntio sustenta, protege, e fornece nutrição aos dentes. O periodôntio consiste em osso, cimento, processo alveolar dos maxilares e mandíbula, ligamento periodontal, e gengiva. O cimento é uma camada calcificada, fina de tecido que cobre completamente a dentina da raiz do dente. O cimento é formado durante o desenvolvimento da raiz e durante toda a vida do dente e funciona como uma área de ligação para as fibras de ligamento periodontal. O processo alveolar é a porção óssea do maxilar e mandíbula onde os dentes são embutidos e em que as raízes do dente são sustentadas. O encaixe alveolar é a cavidade dentro do processo alveolar em que a raiz do dente é sustentada pelo ligamento periodontal. O osso que divide um encaixe de outro é chamado o septo interdental. Quando os dentes multienraizados estão presente, o osso é chamado de septo inter-radicular. O processo alveolar inclui a placa cortical, crista alveolar, osso tra-becular e o próprio osso alveolar .
Por "promover o crescimento" entende-se a cicatrização de osso, periodôntio, ligamento ou cartilagem, e a regeneração de tais tecidos e estruturas. Preferivelmente, o osso, periodôntio, ligamento ou cartilagem é danificado ou ferido e requer a regeneração ou cicatrização.
Por "promover o crescimento do periodôntio" entende-se a regeneração ou cicatrização dos tecidos de sustentação de um dente incluindo o osso alveolar, cimento, e ligamento periodontal interposto, que foi danificado por doença ou trauma.
Por "purificado" entende-se um fator de crescimento ou diferenciação, por exemplo, PDGF, que antes da mistura com uma substâncias veículo, é 95% ou maior em peso, isto é, o fator é substancialmente livre de outras proteínas, lipídeos, e carboidratos com os quais ele está naturalmente associado. O termo "substancialmente purificado" refere-se a uma pureza menor de fator, tendo, por exemplo, apenas 5% - 95% em peso do fator, preferivelmente 65% a 95%. Uma preparação de proteína purificada geralmente produzirá uma única faixa principal em um gel de poliacrilamida. Mais preferivelmente, o fator purificado empregado em materiais de implante da inven- ção é puro como julgado pela análise de seqüência de aminoácido de terminal amino. O termo "parcialmente purificado" refere-se a PDGF que é fornecido no contexto de PRP, PPP, FFP ou qualquer outro produto de sangue que requer a coleta e separação, por exemplo, por centrifugação, para produzir. A título de exemplo, uma solução tendo ~ 1,0 mg/mL de PDGF, quando ~ 50% pura, constitui ~ 2,0 mg/mL da proteína total.
Os materiais de implante desta invenção ajudam na regeneração de periodôntio, pelo menos em parte, promovendo o crescimento de tecido conectivo, osso, e cimento. Os materiais de implante podem ser preparados de modo que eles promovam diretamente o crescimento e a diferenciação de células que produzem tecido conectivo, osso, e cimento. Altemativamen-te, os materiais de implante podem ser preparados de modo que eles ajam indiretamente, por exemplo, atraindo as células que são necessárias para promover o crescimento de tecido conectivo, ósseo, e cimento. A regeneração empregando-se uma composição desta invenção é um tratamento mais eficaz de doenças periodontais ou ferimentos ósseos do que aquele obtido empregando-se antibióticos sistêmicos ou debridamento cirúrgico sozinho. O PDGF, fatores de crescimento de polipeptídeo e fatores de diferenciação podem ser obtidos de tecidos ou células humanos, por exemplo, plaquetas, por síntese de peptídeo de fase sólida ou por tecnologia de DNA recombinante. Desse modo, pelo termo "fator dé crescimento de polipeptídeo" ou "fator de diferenciação," nós queremos dizer tecido ou materiais sintetizados, recombinantes ou derivados de célula. Se o fator for um dímero, por exemplo, PDGF, o fator recombinante pode ser um heterodímero recombinante, feito por inserção em sequências de DNA de células procarióticas ou eucarióticas cultivadas codificando ambas subunidades do fator e em seguida permitindo as subunidades transladadas ser processadas pelas células para formar um heterodímero (por exemplo, PDGF-AB). Alternativamente, DNA codificando apenas uma das subunidades (por exemplo, cadeia A ou cadeia B de PDGF) pode ser inserido em células, que em seguida são cultivadas para produzir o fator de heterodímero (por exemplo, homodímeros de PDGF-AA ou PDGF-BB). PDGF para uso nos métodos da invenção inclui homo e heterodímeros de PDGF, por exemplo, PDGF-AA, PDGF-BB, PDGF-AB, PDGF-CC, e PDGF-DD, e combinações e derivado destes. A concentração de PDGF ou de outros fatores de crescimento da invenção pode ser determinada empregando-se, por exemplo, um imuno-ensaio ligado por enzima, como descrito em, por exemplo, Patente U.S. Ν'*5. 6.221.625, 5.747.273, e 5.290.708, incorporadas aqui por referência ou qualquer outro ensaio conhecido na técnica para determinar a concentração de proteína. Quando fornecido aqui, a concentração molar de PDGF é determinada com base no peso molecular do dímero de PDGF (por exemplo, PDGF-BB; PM= aproximadamente 25 kDa).
Os métodos e materiais de implante da invenção podem ser u-sados empregados para curar feridas ósseas de mamíferos, por exemplo, fraturas, sítios recipientes de implante e sítios de doença periodontal. Os materiais de implante promovem crescimento do tecido conjuntivo e reparo e realça a formação óssea comparada à cicatrização natural (isto é, nenhum agente exógeno adicionado) ou cicatrização suplementada por adição de antibióticos sistêmicos. Ao contrário da cicatrização natural distinta, terapia cirúrgica convencional ou antibióticos, os materiais de implante da invenção sugerem osso aumentado, tecido conjuntivo (por exemplo, cartilagem e ligamento) e formação de cimento quando aplicado aos tecidos danificados e doentes ou aos sítios afetados pela doença periodontal. A restauração destes tecidos leva a um prognóstico melhorado para as áreas afetadas. A capacidade destes fatores estimular a nova formação óssea torna-se aplicável para tratar defeitos ósseos causados por outros tipos de infecção ou trauma cirúrgico ou acidental.
Outros aspectos e vantagens da invenção ficarão evidentes a partir da seguinte descrição das modalidades desta, e das reivindicações. Breve Descrição dos Desenhos As Figuras 1A-1G são fotomicrografias que mostram o efeito sobre a formação de osso 8 semanas depois do tratamento. Figura 1A é uma fotomicrografia que mostra o efeito de cirurgia apenas na formação do osso. Figura 1B é uma fotomicrografia que mostra o efeito de β-TCP apenas na formação do osso. Figura 1C é uma fotomicrografia que mostra o efeito de β-TCP + 0,3 mg/mL de PDGF sobre a formação do osso. Figura 1D é uma fotomicrografia que mostra o efeito de β-TCP + 1,0 mg/mL de PDGF sobre a formação do osso. Figura 1E é uma fotomicrografia que mostra o efeito do aloenxerto de osso seco por congelamento desmineralizado (DFDBA) apenas na formação do osso. Figura 1F é uma fotomicrografia que mostra o e-feito de aloenxerto de osso seco por congelamento desmineralizado (DFDBA) + 0,3 mg/mL de PDGF sobre a formação do osso. Figura 1G é uma fotomicrografia que mostra o efeito de aloenxerto de osso seco por congelamento desmineralizado (DFDBA) + 1,0 mg/mL sobre a formação do osso.
As Figuras 2A-2C são fotomicrografias que mostram o efeito sobre a formação do osso 16 semanas depois do tratamento. Figura 2A é uma fotomicrografia que mostra o efeito de β-TCP apenas sobre a formação do osso. Figura 2B é uma fotomicrografia que mostra o efeito de β-TCP + 0,3 mg/mL de PDGF sobre a formação do osso. Figura 2C é uma fotomicrografia que mostra o efeito de β-TCP + 1,0 mg/mL de PDGF sobre a formação do osso.
Descrição Detalhada Foram descritas várias modalidades da invenção agora. Dois exemplos que demonstram o uso de PDGF como um agente de cicatrização do periodonto e osso são apresentados abaixo.
Exemplos Exemplo I: Preparação de PDGF
Feridas ósseas, por exemplo, seguindo trauma ou doença perio-dontal, são tratadas e o periodonto, incluindo osso, cimento e tecido conjun-tivo, são regenerados, de acordo com a invenção combinando-se PDGF purificado ou parcialmente purificado com quaisquer das substâncias de veículo farmaceuticamente aceitável descritas acima. PDGF purificado pode ser obtido de uma fonte recombinante ou de plaquetas humanas. PDGF recom-binante comercialmente disponível pode ser obtido de R&D Systems Inc. (Minneapolis, MN), BD Biosciences (San Jose, CA), e Chemicon, Internacional (Temecula, CA). PDGF parcialmente purificado e purificado pode da mesma forma ser preparado como segue: Quinhentas a 1000 unidades de péletes de plaqueta humanas lavadas são suspensas em 1M de NaCI (2 ml por unidade de plaqueta) e aquecidas a 100°C durante 15 minutos. O sobrenadante é em seguida separado por centrifugação e o precipitado extraído duas vezes com 1 m de NaCI.
Os extratos são combinados e dialisados contra 0,08M de NaCI/ 0,01 M de tampão de fosfato de sódio (pH 7,4) e misturado durante a noite às 4°C com CM-Sephadex C-50 equilibrada com tampão. A mistura é em seguida derramada em uma coluna (5 x 100 cm), lavada extensivamente com 0,08M de NaCI/0,01M de tampão de fosfato de sódio (pH 7,4), e eluída com 1M de NaCI enquanto frações de 10 ml são coletadas.
As frações são agrupadas e dialisadas contra 0,3M de NaCI/0,01 M de tampão de fosfato de sódio (pH 7,4), centrifugadas, e passadas a 4°C através de uma coluna de 2,5 x 25 cm de sefarose azul (Pharmacia) equilibrada com 0,3M de NaCI/0,01 M de tampão de fosfato de sódio (pH 7,4). A coluna é em seguida lavada com o tampão e PDGF parcialmente purificado eluído com uma solução de 1: 1 de 1M de NaCI e etileno glicol.
As frações de PDGF parcialmente purificado são diluídas (1:1) com 1M de NaCI, dialisadas contra 1M de ácido acético e liofilizadas. As amostras liofilizadas são dissolvidas em 0,8M de NaCI/0,01 M de tampão de fosfato de sódio (pH 7,4) e passadas através de uma coluna de 1,2 x 40 cm de Cm-Sephadex C-50 equilibrada com o tampão. PDGF é em seguida eluído com um gradiente de NaCI (0,08 a 1M).
As frações ativas são combinadas, dialisadas contra 1M de ácido acético, liofilizadas, e dissolvidas em um volume pequeno de 1M de ácido acético. Porções de 0,5 ml são aplicadas a uma coluna de 1,2 x 100 cm de Biogel P-150 (100 a 200 malhas) equilibrada com 1M de ácido acético. O PDGF é em seguida eluído com de 1M de ácido acético enquanto frações de 2 mL são coletadas.
Cada fração ativa contendo 100 a 200 mg de proteína é liofiliza-da, dissolvida em 100 mL de ácido trifluoroacético a 0,4%, e submetida à cromatografia líquida de alto desempenho de fase reversa em uma coluna Bondapak (Waters). A eluição com um gradiente de acetonitrilo linear (0 a 60%) produz o PDGF puro. PDGF Feito Por Tecnologia de DNA Recombinante Pode Ser Preparado Como Segue: Fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF) derivado de plaquetas humanas contém duas seqüências de polipeptídeo (polipeptídeos de PDGF-A e PDGF-B; Antoniades, H.N. e Hunkapiller, M., Science 220:963-965, 1983). PDGF-B é codificado por um gene localizado no cromossomo 7 (Betsholtz, C. e outros, Nature 320:695-699), e PDGF-A é codificado pelo oncogene sis (Doolittle, R. e outros, Science 221:275-277, 1983) localizado no cromossomo 22 (Dalla-Favera, R., Science 218:686-688, 1982). O gene sis codifica a proteína transformadora do Vírus de Sarcoma de Símio (SSV) que é estritamente referido ao polipeptídeo de PDGF-2. O c-sis celular humano da mesma forma codifica a cadeia de PDGF-A (Rao, C. D. e outros, Proc. Natl. Acad. Sei. USA 83:2392-2396, 1986). Porque as duas cadeias de polipeptídeo de PDGF são codificadas por dois genes diferentes localizados em cromossomos separados, existe a possibilidade que PDGF humano consiste em um heterodímero ligado por dissulfeto de PDGF-B e PDGF-A ou uma mistura de dois homodímeros (homodímero de PDGF-BB e homo-dímero de PDGF-AA) ou uma mistura do heterodímero e de dois homodímeros. Células mamíferas na cultura infetada com o Vírus de Sarcoma de Símio que contêm o gene que codifica a cadeia de PDGF-A, foram mostrado para sintetizar o polipeptídeo de PDGF-A e processá-lo em um homodímero ligado por dissulfeto (Robbins e outros, Nature 305:605-608, 1983). Além disso, o homodímero de PDGF-A reage com anti-soros construídos contra PDGF humano. Além disso, as propriedades funcionais do homodímero de PDGF-A segregado são similares aquelas de PDGF derivado de plaqueta desde que estimule a síntese de DNA em fibroblastos cultivados, induzem a fosforilação no resíduo de tirosina de uma proteína de membrana celular de 185 kD, e são capazes de competir com (125I)-PDGF humano para ligar-se a receptores de PDGF de superfície celular específica (Owen, A. e outros, Science 225:54-56, 1984). Propriedades similares foram mostradas para o produto de gene de sis/PDGF-A derivado de células humanas normais cultivadas (por exemplo, células endoteliais arteriais humanas) ou de células malignas humanas que expressam o gene de sis/PDGF-2 (Antonia-des, H. e outros, Câncer Cells 3:145-151, 1985). O homodímero de PDGF-B recombinante é obtido pela introdução de clones de cDNA de gene de c-sis/PDGF-B em células de camundon-go empregando um vetor de expressão. O clone de c-sis/PDGF-B empregado para a expressão foi obtido de células endoteliais cultivadas humanas normais (Collins, T, e outros, Nature 216:748-750, 1985).
Uso de PDGF PDGF sozinho ou em combinação com outros fatores de crescimento é útil para promover a cicatrização do osso, crescimento e regeneração do osso ou cicatrização das estruturas de suporte dos dentes prejudicados por trauma ou doença. É da mesma forma útil promover a cicatrização de um sítio de extração de um dente, para aumento da crista mandibular ou em sítios de implante de dente. A cicatrização do osso da mesma forma seria realçada em sítios de fratura óssea ou em áreas infectadas, por exemplo, osteomielite ou em sítios de tumor. PDGF é da mesma forma útil para promover o crescimento e cicatrização de um ligamento, por exemplo, o ligamento periodontal e do cimento.
No uso, o PDGF ou outro fator de diferenciação ou crescimento é diretamente aplicado à área que necessita de cicatrização ou regeneração. Geralmente, é aplicado em um veículo reabsorvível ou não reabsorvível como um líquido ou sólido, e o sítio em seguida revestido com uma bandagem ou tecido próximo. Uma quantidade suficiente para promover o crescimento do osso está geralmente entre 500 ng e 5 mg para uma área de 1 cm2, mas o limite superior é realmente 1 mg para uma área de 1 cm2, com uma quantidade preferida de PDGF aplicado sendo 0,3 mg/mL.
Exemplo II: Regeneração Peridental Com Andaimes Osteocondutivos Tratados com rhPDGF-BB A eficácia de PDGF na promoção do periodonto e crescimento ósseo é demonstrada pelo seguinte estudo.
Estudo em Cachorro In Vivo O cachorro beagle é o modelo de animal mais amplamente empregado para testar procedimentos e materiais de regeneração periodontal putativos (Wikesjo e outros, J Clin. Periodontal. 15:73 - 78, 1988; Wikesjo e outros, J. Clin. Periodontal. 16:116-119, 1999; Cho e outros, J. Periodontol. 66:522-530, 1995; Giannobile e outros, J Periodontal. 69:129-137, 1998; e Clergeau e outros, J. Periodontol. 67:140-149, 1996). O acúmulo de cálculo e placa pode induzir a inflamação gengival que pode levar à perda óssea marginal e a etiologia de periodontite em cachorros e humanos pode ser comparada. Em doença de ocorrência natural, entretanto, há uma falta de uniformidade entre os defeitos. Adicionalmente, como mais atenção foi dada à saúde oral em colônias de criador caninas, tomou-se não prático obter animais com doença periodontal natural. Portanto, o modelo de bifurcação de Classe II horizontal cirurgicamente induzida III tomou-se um dos modelos mais geralmente empregados para investigar a regeneração e cicatrização periodontal.
Cachorros beagle com defeitos de bifurcação de Classe III horizontal foram tratados empregando as composições de PDGF da invenção. Quinze cachorros beagle adultos contribuíram 60 defeitos tratados. Quarenta e dois defeitos passam por biópsia dois meses depois do tratamento e quinze defeitos passaram por biópsia quatro meses depois do tratamento. Preparação do Defeito O modelo de defeito periodontal de "tamanho crítico" como descrito por numerosos investigadores foi utilizado (veja, por exemplo, Wikesjo, 1988 e 1999, supra; Giannobile, supra, Cho, supra, e Park e outros, J. Periodontal 66:462-477, 1995). Ambos quadrantes mandibulares em 16 cachorros beagle machos (2-3 anos de idade) sem os problemas de saúde orais e gerais são empregados. Um mês antes da dosagem, os animais foram sedados com uma injeção subcutânea de atropina (0,02 mg/kg) e acepromazi-na (0,2 mg/kg) aproximadamente 30 minutos antes de ser anestesiados com uma injeção IV de pentobarbital sódico (25 mg/kg). Seguindo a infiltração local da área cirúrgica com HCI de Lidocaína mais epinefrina 1: 100,000, retalhos mucoperiosteais de espessura ampla foram refletidas e os primeiros e terceiros pré-molares (P1 e P3) foram extraídos. Adicionalmente, a porção proximal da coroa do 1o molar foi ressecada.
Osso alveolar foi em seguida removido ao redor da circunferência inteira de P2 e P4, incluindo as áreas de bifurcação empregando cinzéis e brocas de diamante e carboneto resfriado com água. Defeitos ósseos horizontais foram criados tal que havia uma distância de 5 mm do fórnice da bifurcação à crista do osso. Os defeitos foram de aproximadamente 1 cm de largura, dependendo da largura do dente. As raízes de todos os dentes experimentais foram aplanadas com curetas e instrumentos ultra-sônicos e instrumentadas com uma broca de diamante afilada para remover o cimento. Depois que os defeitos ósseos padronizados foram criados, os retalhos gen-givais foram suturadas para obter o fechamento primário. Os animais foram alimentados com uma dieta branda e receberam enxágües de clorexidina diariamente durante a duração do estudo.
Aplicação de Material de Enxerto Os defeitos periodontais de P2 e P4 em cada quadrante mandi-bular dos 15 animais foram aleatorizados antes do tratamento empregando envelopes lacrados. Cerca de quatro semanas depois da preparação de defeito, os animais foram reanestesiados como descrito acima e retalhos com espessura ampla foram refletidas em ambos os quadrantes mandibulares. Uma incisura foi colocada nas superfícies da raiz do dente na crista óssea residual empregando uma broca redonda de 1/2 para servir como um ponto de referência histológico futuro. Os sítios foram irrigados com solução salina estéril e as raízes foram tratadas com ácido cítrico como previamente descrito com a finalidade de desinfecção e remoção da camada de esfregaço (Veja, por exemplo, Cho, supra, e Park, supra). Durante este período, uma quantidade de β-TCP ou DFDBA suficiente para preencher o defeito perio-dontal foi saturada com uma solução de solução de rhPDGF-BB (0,3 ou 1,0 mg/ml) e a mistura de enxerto/rhPDGF-BB foi permitida assentar no ponto cirúrgico estéril durante cerca de dez minutos. O enxerto saturado de rhPDGF-BB foi em seguida embalado no defeito com pressão suave ao nível ideal de regeneração óssea.
Depois de implantação do material de enxerto, os retalhos mu-coperiosteais foram suturados aproximadamente no nível da junção esmal-todentinária (CEJ) empregando suturas de põlitetrafluoroetileno expandida (ePTFE) de 4.0 interrompidas, interproximais. Seguindo a suturação dos retalhos, gel de gliconato de clorexidina foi colocado suavemente ao redor dos dentes e gengivas.
Grupos de Tratamento e Controle Os defeitos receberam qualquer destes: 1. β-TCP 2. β -TCP mais rhPDGF-BB (0,3 mg/ml de rhPDGF-BB) 3. β-TCP mais rhPDGF-BB (1,0 mg/ml de rhPDGF-BB) 4. Cão DF DBA 5. Cão DFDBA mais rhPDGF-BB (0,3 mg/ml de rhPDGF-BB) 6. Cão DFDBA mais rhPDGF-BB (1,0 mg/ml de rhPDGF-BB) 7. Cirurgia simulada (tratada por debridamento de ponta aberta, nenhum enxerto) Seis defeitos por grupo de tratamento foram biopsiados em dois meses (42 sítios totais). Além disso, cinco defeitos nos grupos de tratamento 1,2, e 3 foram biopsiados em quatro meses (15 sítios totais).
Tabela 2. Planejamento Experimental Conseqüentemente, em 8 semanas existem 7 grupos divididos entre 42 sítios em 11 cães. Em 16 semanas, existem 3 grupos divididos entre 15 sítios em 4 cães (um cão recebeu duas cirurgias de tratamento alternadas oito semanas de espaçamento e desse modo contribuiu dois sítios a cada 8 e 16 semanas pontos de tempo de semana).
Tratamento Pós-Cirúrqico Os sítios cirúrgicos foram protegidos alimentando-se os cães com uma dieta macia durante as 4 primeiras semanas pós-operativas. Para garantir o tratamento antibiótico sistêmico curativo ideal, com benzatina de penicilina G foi fornecido durante as duas primeiras semanas e o controle de placa foi mantido por irrigação diariamente com 2% de gliconato de clorexi-dina em toda a experiência. As suturas foram removidas depois de 3 semanas.
Coleta de dados Fundamento Lógico para Pontos de Coleta de Dados O ponto de tempo de oito semanas foi escolhido porque este é o ponto de tempo mais comum reportado para este modelo na literatura e portanto há dados históricos substanciais. Por exemplo, Wikesjo e outros, supra, e Giannobile e outros, supra, também escolheram 8 semanas para avaliar os efeitos regenerativos de BMP-2 e OP-I, respectivamente, no mesmo modelo. Adicionalmente, Park e outros, supra, avaliou o efeito ou rhPDGF-BB aplicado diretamente à superfície da raiz condicionada com e sem membranas de GTR no modelo de cão bigle de 8 semanas. Estes estudos, fortemente sugerem que o período de 8 semanas deveria ser ideal para ilustrar os efeitos significantes potenciais entre as várias modalidades de tratamento. O ponto de tempo de dezesseis semanas foi escolhido para avaliar efeitos em longo prazo de tratamento de fator de crescimento. Estudos anteriores (Park e outros, supra) sugerem que neste tempo há cura espontânea substancial dos defeitos ósseos. Não obstante, é possível avaliar se o tratamento de rhPDGF-BB conduz a qualquer resposta de tecido anormal ou incomum, tal como osso remodelagem óssea alterada, tumorigênese ou re-absorção radicular.
Avaliações do Tratamento e Biópsias Na hora da biópsia, os animais foram perfundidos com 4% de paraformaldeído e sacrificados. As mandíbulas foram então removidas e colocadas no fixador. As radiografias periapicais foram tiradas e os sítios tratados foram cortados em blocos individuais empregando um serra a diamantes. Os blocos codificados (fechados) foram embrulhados em gaze, imersos em uma solução de 4% de formaldeído, processados, e analisados.
Durante o processamento as biópsias foram desidratadas em etanol que e infiltradas que e incluídas em metilmetacrilato. As seções não calcificadas de aproximadamente 300 pm em espessura foram obtidas empregando uma serra a diamante de baixa velocidade com refrigeração. As seções foram coladas sobre o vidro acrílico opalescente, moído para uma espessura final de aproximadamente 80 pm, e manchado com azul toluidina e fucsina básica. As seções seriais da etapa foram obtidas em um plano me-sodistal.
As análises histomorfométricas foram realizadas nas lâminas cobertas. Os seguintes parâmetros foram avaliados: 1. Comprimento do Aparato de Ligação Novo Completo (CNAA): Regeneração periodontal medida como a distância entre o nível de coronal do osso velho e o nível coronal do osso novo, incluindo somente aquele osso novo adjacente ao cimento novo com ligamento periodontal funcionalmente orientado entre o osso novo e o cimento novo. 2. Enchimento do Osso Novo (NB): Medida como a área em seção transversal do osso novo formado na bifurcação. 3. Enchimento de Tecido Conjuntivo (CT): Medido como a área na bifurcação ocupada pelos tecido conjuntivo gengival. 4. Nulo (VO): A área de recessão onde há uma ausência de tecido. Resultados A. Observações Clínicas Clinicamente, todos os sítios curaram bem. Houve uma impressão que os sítios tratados com rhPDGF-BB curaram mais rapidamente, como indicado pela presença de gengivas rosas, firmes em uma semana pós- operativamente. Não houve nenhum evento adverso experimentado em qualquer grupo de tratamento como avaliado por inspeção visual dos sítios tratados. Pareceu ser aumentada a recessão gengival nos grupos que receberam β-TCP ou DFDBA apenas. B. Observações Radioqráficas Radiograficamente, houve evidência de formação óssea aumentada em dois meses como julgado pela radiopacidade aumentada nos Grupos 2, 3 (β-TCP + rhPDGF-BB 0,3 e 1,0 mg/ml, respectivamente) e 6 (DFDBA + rhPDGF-BB 1,0 mg/ml) comparado com os outros grupos (Figuras 1A-G). Em quatro meses, houve evidência de formação óssea aumentada em todos os grupos comparados com o ponto de tempo de dois meses. Não houve nenhuma evidência radiográfica de qualquer remodelagem óssea anormal, reabsorção radicular ou ancilose em qualquer grupo.
Tabela 3. Resultados Radioqráficos. Ordem de classificação.________________ * 1= mais enchimento; 7= menos enchimento C. Análises Histomorfométricas: A avaliação histomorfométrica do comprimento do cimento novo, osso novo, e ligamento periodontal novo (CNAA) bem como enchimento ósseo novo, enchimento de tecido conjuntivo, e espaço vazio foram avaliados e são expressos como porcentagens. No caso de CNAA, os valores para cada grupo de teste representam as medições de CNAA (comprimento em mm)/comprimento de CNAA disponível total (em mm) x 100%. O enchimento ósseo, enchimento de tecido conjuntivo e espaço vazio foram avaliados e são expressos como porcentagens da área de defeito de bifurcação total. A análise unidirecional de variação (ANOVA) foi empregada para testar quanto às diferenças globais entre os grupos de tratamento, e comparações em pares foram feitas empregando o teste t de Student. Diferenças significantes entre os grupos foram constatadas sob análises das lâminas codificadas.
Tabela 4. Análise histomérica de dois meses. * Grupos 2 e 3 significantemente maiores (p < 0,05) do que os Grupos 4 e 7. * * Grupo 1 significantemente maior (p < 0,05) do que o Grupo 4. f Grupo 2 significantemente maior (p < 0,05) do que o Grupo 5. $ Grupos 2 e 3 significantemente maiores do que os Grupos 1,4 e 7. Φ Grupo 6 significantemente maior do que o Grupo 4.
As porcentagens médias da regeneração periodontal (CNAA) na cirurgia sem enxertos e cirurgia mais grupos de β-TCP sozinho foram 27% e 37%, respectivamente. Em contraste, os grupos de β-TCP contendo rhPDGF-BB exibiram regeneração periodontal significantemente maior (p < 0,05) do que a cirurgia sem enxertos ou DFDBA sozinho (59% e 46% respectivamente para as concentrações de 0,3 e 1,0 mg/ml contra 27% para cirurgia sozinha e 13% para DFDBA sozinho). Finalmente, o grupo de β-TCP que contém 0,3 mg/ml de rhPDGF-BB demonstrou regeneração periodontal significantemente maior (p < 0,05) do que a mesma concentração de rhPDGF-BB combinado com aloenxerto (59% versus 21 %). O enchimento ósseo foi significantemente maior (p < 0,05) nos grupos de β-TCP + 0,3 mg/ml de rhPDGF-BB (84,0%) e β-TCP + 1,0 mg/ml de rhPDGF-BB (74,2%) do que nos grupos de tratamento de β-TCP sozinho (28,0%), cirurgia sozinha (34%) ou DFDBA sozinho (6%). Também houve enchimento ósseo significantemente maior (p < 0,05) para o grupo de β-TCP + 0,3 mg/ml de rhPDGF-BB comparado com o grupo de DFDBA + 0,3 mg/ml de rhPDGF-BB (84% e 20% respectivamente). O grupo de análises examinando os dados de 8 semanas dos grupos de DFDBA e do grupo de cirurgia sozinha (Grupos 4, 5, 6, e 7) não demonstrou nenhuma diferença estatisticamente significante entre os grupos de DFDBA e cirurgia sozinha para regeneração periodontal (CNAA). Houve uma tendência de maior regeneração para aqueles sítios tratados com DFDBA realçado com 1,0 mg/ml de rhPDGF-BB versus DFDBA sozinho. Houve enchimento ósseo significantemente maior (p < 0,05) para os sítios tratados com DFDBA + 1,0 mg/ml de rhPDGF-BB do que DFDBA sozinho (46 e 6% respectivamente). Houve uma tendência ao maior enchimento ósseo para sítios tratados com DFDBA contendo 0,3 mg/ml de rhPDGF - BB comparado com DFDBA sozinho ou cirurgia sozinha. Entretanto, os sítios tratados com DFDBA sozinho demonstraram menos enchimento ósseo no defeito do que a cirurgia sozinha (6 e 34%, respectivamente), com a maioria do defeito sendo destituída de qualquer enchimento ou enchimento consistindo em tecido conjuntivo gengival (mole).
Em quatro meses seguintes ao tratamento, as diferenças signifi-cantes permaneceram na regeneração periodontal. O β-TCP sozinho, como resultado de ancilose extensa, resultou em 36% de regeneração, ao mesmo tempo em que os sítios tratados β-TCP contendo rhPDGF-BB tiveram uma regeneração média de 58% e 49% nas concentrações de o 0,3 e 1,0 mg/ml de rhPDGF-BB. O enchimento ósseo substanciai esteve presente em todos os três grupos de tratamento. O β-TCP sozinho resultou em 70% de enchimento ósseo, β-TCP mais 0,3 mg/ml de rhPDGF produziu 100% de enchimento ao mesmo tempo em que o grupo de 1,0 mg/ml de rhPDGF teve 75% de enchimento. D, Avaliação Histolóqica A avaliação histológica foi realizada para todas as biópsias exceto uma, na qual a avaliação não foi possível devido às dificuldades encontradas durante o processamento.
As fotomicrografias representativas são mostradas nas Figuras 1A-G e 2A-C. A Figura 1A mostra os resultados de um local tratado com cirurgia sozinha (nenhum enxerto). Este espécime demonstra a regeneração periodontal limitada (osso novo (NB), cimento novo (NC), e ligamento perio-dontal (PDL)) como comprovado na área das chanfraduras e prolongando somente uma distância curta coronariamente. A área da bifurcação é principalmente ocupada pelo tecido conjuntivo (CT) mole denso com mínima formação do osso novo (NB).
Para os sítios tratados com β-TCP sozinho (Figura 1B) há regeneração periodontal, similar àquela observada para o espécime de cirurgia sozinha, que se estende da base das chanfraduras para uma distância coronariamente curta. Gomo foi visto nos espécimes de cirurgia sozinha, houve pouquíssima formação de osso novo com a maior área da bifurcação sendo ocupada pelo tecido conjuntivo mole.
Em contraste, a Figure 1C ilustra os resultados obtidos para os sítios tratados com β-TCP + 0,3 mg/ml de rhPDGF-BB. A regeneração periodontal significante é mostrada com osso novo, cimento novo, e ligamento periodontal que se estende ao longo da superfície inteira da bifurcação. Adicionalmente, a área da bifurcação é carregada com osso novo que estende a altura inteira da bifurcação ao fórnix.
Os resultados representativos para sítios tratados com β-TCP + 1,0 mg/ml de rhPDGF-BB são mostrados na Figura 1D. Ao mesmo tempo em que há regeneração periodontal significante na bifurcação, ela não se estende ao longo da superfície inteira da bifurcação. Há formação de osso novo presente junto com o tecido conjuntivo mole que é observado na porção coronal do defeito junto com um espaço pequeno que está sem qualquer tecido (VO) no fórnix da bifurcação.
As Figuras 2A, 2B, e 2C ilustram os resultados obtidos para os grupos de tratamento de aloenxerto. Os resultados representativos para o grupo de DFDBA sozinho (Figura 2A) mostram regeneração periodontal muito pobre que é limitada à área das chanfraduras estendendo-se somente ligeiramente em uma direção coronal. A formação de osso novo é limitada e consiste em quantidades pequenas de formação de osso ao longo da superfície de material de enxerto de DFDBA residual (manchamento vermelho escuro ao longo das ilhas rosas mais claras). Adicionalmente, o osso novo é rodeado por tecido conjuntivo mole extenso que se estende coronariamente para carregar uma área significante na bifurcação. Finalmente, um grande espaço vazio estende-se da extensão coronal do tecido conjuntivo mole para o fórnix da bifurcação.
Os resultados histológicos o DFDBA + 0,3 1,0 mg/ml de rhPDGF-BB são mostrados nas Figuras 2B e 2C, respectiva mente. Ambos os grupos demonstram maior regeneração periodontal comparado com DFDBA sozinho com um aparato de ligação novo completo (osso novo, cimento novo, e ligamento periodontal) estendendo-se da base das chanfraduras nas raízes para uma distância coronariamente curta (setas). Eles também tiveram maior enchimento ósseo na área da bifurcação, embora houvesse enchimento significante da bifurcação com tecido conjuntivo mole. Conclusões Com base nos resultados do estudo, o tratamento de um defeito periodontal empregando rhPDGF-BB em ou 0,3 mg/mL ou 1,0 mg/mL em combinação com um material veículo adequado (por exemplo, β-TCP) resulta em maior regeneração periodontal do que os procedimentos ou produtos atuais, tal como enxertos com β-TCP ou aloenxerto ósseo sozinho ou cirurgia periodontal sem enxertos. O tratamento com ο 0,3 mg/mL e 1,0 mg/mL de concentração de rhPDGF resultou na regeneração periodontal. A concentração de 0,3 mg/ml de rhPDGF demonstrou maior regeneração periodontal e porcentagem de enchimento ósseo quando comparada com a concentração de 1,0 mg/ml de rhPDGF quando misturado com /3-TCP. β-TCP foi mais efetivo do que o aloenxerto quando misturado com rhPDGF-BB em qualquer concentração. O osso novo amadureceu (remodelou) normalmente com o passar do tempo (0, 8, e 16 semanas) em todos os grupos. Não houve nenhum aumento em ancilose ou reabsorção ra-dicular nos grupos de rhPDGF. Na realidade, os sítios recebendo rhPDGF-BB tenderam a ter menos ancilose do que os sítios de controle. Esta descoberta pode resultar do fato que rhPDGF-BB é quimiotático e mitogênico para células de ligamento periodontais.
Materiais e Métodos Materiais Utilizados: Artigos de Controle e Teste O β-TCP utilizado teve um tamanho de partícula (0,25 mm—1,0 mm) que foi otimizado para uso periodontal. Com base nos estudos que empregando um modelo canino, o β-TCP administrado é 80% reabsorvido dentro de três meses e é substituído pelo osso autólogo durante o processo curativo. O DFDBA foi fornecido por Musculoskeletal Transplant Foundation (MTF). O material foi aloenxerto de cachorro, feito dos ossos de um cachorro que foi morto seguinte à conclusão de outro estudo que testou um procedimento cirúrgico que foi julgado não ter nenhum efeito em tecidos do esqueleto. O hPDGF-BB recombinante foi fornecido por BioMimetic Phar-maceuticals e foi fabricado por Chiron, Inc, o único fornecedor de rhPDGF-BB aprovado por FDA para uso humano. Este rhPDGF-BB foi aprovado pelo FDA como um produto de cura de ferida sob o nome comercial de Regra-nex .
Seringas de um ml contendo 0,5 ml de rhPDGF-BB estéril em duas concentrações separadas preparadas em conformidade com padrões de FDA para materiais humanos e de acordo com o Bom Processo de Fabricação aplicável atual (cGMP). As concentrações testadas incluíram 0,3 mg/ml e 1,0 mg/ml. β-TCP foi fornecido em frascos contendo 0,5 cc de partículas estéreis. DFDBA foi fornecido em seringas de 2,0 ml contendo 1,0 cc de aloenxerto de osso de cão estéril, desmineralizado liofilizado.
Preparação do Material Na hora do procedimento cirúrgico, os enxertos implantados finais foram preparados misturando-se a solução de rhPDGF-BB com os materiais de matriz. Resumidamente, uma quantidade de TCP ou aloenxerto suficiente para carregar completamente o defeito ósseo foi colocada em um prato estéril. A solução de rhPDGF-BB suficiente para completamente saturar a matriz foi em seguida adicionada, os materiais foram misturados e permitidos assentar-se na bandeja cirúrgica durante cerca de 10 minutos a temperatura ambiente antes de serem colocados no defeito ósseo.
Um tempo de incubação de 10 minutos com o material de β-TCP é suficiente para obter absorção máximo do fator de crescimento (veja A-pêndice A). Para cirurgiões em um quadro clínico, esta é também uma quantidade apropriada de tempo para se ter antes da colocação do produto no defeito periodontal. Similarmente, em um mercado comercial, o rhPDGF-BB e o material de matriz podem ser fornecidos em recipientes separados em um kit e estes materiais podem ser misturados diretamente antes da colocação. Este conceito de kit grandemente simplificaria as considerações de estabilidade/ vida de prateleira do produto.
Exemplo III: Uso de PDGF para O Tratamento De Defeitos de Osso Periodontal em Humanos O PDGF-BB recombinante humano (rhPDGF-BB) foi testado quanto ao seu efeito na regeneração de osso periodontal em indivíduos humanos. Dois grupos de teste foram administrados com rhPDGF-BB em 0,3 mg/mL (Grupo I) ou 1,0 mg/mL (Grupo II). O rhPDGF-BB foi preparado em tampão de acetato de sódio e administrado em um veículo de beta-fosfato de tricálcio (β-TCP). O grupo de controle, Grupo III, foi administrado com β-TCP em tampão de acetato de sódio somente. O objetivo do estudo clínico foi avaliar a segurança e eficácia do material de enxerto compreendendo β-TCP e rhPDGF-BB em 0,3 mg/mL ou 1,0 mg/mL na manipulação de um (1) a três (3) defeitos periodontais de parede intra-ósseos e para avaliar sua capacidade regenerativa no osso e tecido mole.
Designação do Estudo e Duração do Tratamento O estudo foi uma experiência clínica de multicentro designada paralela, aleatorizada, prospectíva, controlada, dupío-cego em indivíduos que requereram intervenção cirúrgica para tratar um defeito ósseo adjacente à dentição natural. Os indivíduos foram aleatorizados em proporções iguais para resultar em três (3) grupos de tratamento de aproximadamente 60 indivíduos cada (180 total). A duração do estudo foi seis (6) meses após o implante do dispositivo de estudo. O estudo inscreveu 180 indivíduos.
Diaanose e Critérios de Entrada Principais Os indivíduos machos e fêmeas, 25-75 anos de idade, com doença periodontal avançada em pelo menos um sítio requerendo tratamento cirúrgico para corrigir um defeito do osso, foram admitidos para o estudo. Outros critérios de inclusão incluíram: 1) uma profundidade de bolsa de sonda medindo 7 mm ou maior na visita de valor de referência; 2) após o debri-damento cirúrgico, o defeito de osso vertical de 4 mm ou maior (BD) com pelo menos 1 parede óssea; 3) tecido ceratinizado suficiente para permitir a cobertura de tecido completa do defeito; e, 4) base radiográfica do defeito pelo menos 3 mm coronal ao ápice do dente. Os indivíduos que fumaram até 1 pacote por dia e que tinham dentes com envolvimento de bifurcação de Classe I & II foram especificamente admitidos.
Dose e Modo de Administração Todos os kits de tratamento contiveram 0,25 g de β-TCP (um controle ativo) e ou 0,5 mL de solução de tampão de acetato de sódio sozinha (Grupo III), 0,3 mg/mL de rhPDGF-BB (Grupo I) ou 1,0 mg/mL de rhPDGF-BB (Grupo II).
Seguinte o debridamento completo e planejamento da raiz, a solução de teste foi misturada com β-TCP em um recipiente estéril, tal que o β-TCP fosse completamente saturado. As superfícies da raiz foram condicionadas empregando ou tetraciclina, EDTA ou ácido cítrico. O enxerto hidratado foi então embalado no defeito ósseo e as pontas de tecido foram presas com suturas interdentais para obter cobertura completa do sítio cirúrgico. Medição da Eficácia A medição da eficácia principal incluiu a alteração em nível de ligação clínica (CAL) entre o valor de referência e os seis meses pós-cirurgia (Grupo I vs. Grupo III). As medições de eficácia secundária consistiram nos seguintes resultados: 1) crescimento ósseo linear (LBG) e % de enchimento ósseo (% de BF) do valor de referência em seis meses pós-cirurgia com base nas avaliações radiográficas (Grupo I e Grupo II vs. Grupo III); 2) alteração em CAL entre o valor de referência e seis meses pós-cirurgia (Grupo II vs Grupo III); 3) redução da profundidade da bolsa de sonda (PDR) entre o valor de referência e seis meses pós-cirurgia (Grupo I e Grupo II vs Grupo III); 4) recessão gengival (GR) entre o valor de referência e seis meses pós-cirurgia (Grupo I e Grupo II vs Grupo III); 5) cura da ferida (WH) do sítio cirúrgico durante as primeiras três semanas pós-cirurgia (Grupo I e Grupo II vs Grupo III); 6) área sob a curva para a alteração em CAL entre o valor de referência e três (3) e seis (6) meses (Grupo I e Grupo II vs Grupo lll); 7) a ligação de menor confidência a 95% (LCB) para % de BF em seis (6) meses pós-cirurgia (Grupo I, II, lll vs. aloenxerto ósseo iiofilizado desmineralizado (DFDBA) como publicado na literatura; Parashis e outros, J. Periodontal. 69:751-758, 1998); 8) o LCB a 95% para crescimento ósseo linear em seis (6) meses pós-cirurgia (Grupos I, II, e lll vs aloenxerto ósseo Iiofilizado desmineralizado (DFDBA) como publicado na literatura; Persson e outros, J. Clin. Periodontal. 27:104-108, 2000); 9) o LCB a 95% para a alteração em CAL entre o valor de referência e seis (6) meses pós-cirurgia (Grupo I, II, e II vs. EMDOGAIN® - PMA P930021, 1996); e 10) o LCB a 95% para a alteração em CAL entre o valor de referência e seis (6) meses (Grupos I, II e lll vs PEPGEN P-15® - PMA P990033, 1999). Métodos Estatísticos Os dados de segurança e eficácia foram examinados e resumidos por estatísticas descritivas. As medições categóricas foram exibidas como contagens e percentuais, e variáveis contínuas foram exibidas como meios, médias, desvios padrão e faixas. As comparações estatísticas entre os grupos de tratamento de produto de teste (Grupos I e II) e do controle (Grupo III) foram feitas empregando os provas do qui quadrado e Exata de Fisher para variáveis categóricas e testes t ou Análise de Métodos de Variação (ANOVA) para variáveis contínuas. As comparações entre grupos de tratamento para variáveis ordinais foram feitas empregando os métodos Co-chran-Mantel-Haenszel. Um p < 0,05 (um lado) foi considerado ser estatisticamente significante para CAL, LBG e % de BF.
Os dados de segurança foram avaliados pela freqüência gravidade dos eventos adversos quando avaliados radiograficamente e clinicamente. Não houve nenhuma diferença significante entre os três grupos de tratamento no valor de referência. Não houve também nenhuma diferença estatisticamente significante observada na incidência de eventos adversos (AEs; todas as causas) entre os três grupos de tratamento. A análise de segurança não identifica qualquer risco aumentado para o indivíduo devido ao implante do material de enxerto.
Sumário dos Resultados da Eficácia Os resultados das análises estatísticas revelaram ambos benefícios clinicamente e estatisticamente significantes para os dois grupos de tratamento (Grupos I e II), comparados com o controle ativo de β-TCP sozinho (Grupo III) e controles históricos incluindo DFDBA, EMDOGAIN®, e PEPGEN P-15® Em três meses pós-cirurgia, um ganho de CAL estatisticamente significante do valor de referência foi observado em favor do Grupo I vs. Grupo III (p = 0,041), indicando que há benefícios precoces significantes'de PDGF no ganho de CAL. Em seis meses pós-cirurgia, esta tendência continuou favorecendo o Grupo I sobre o Grupo III, embora esta diferença não tenha sido estatisticamente significante (p = 0,200). A análise da área sob a curva (AUC) que representa o efeito cumulativo (isto é, velocidade) para ganho de CAL entre o valor de referência e seis meses, se aproximou da signi-ficância estatística que favorece o Grupo I em comparação com o Grupo III (p=0,054). Além disso, a análise da ligação de menor confidência a 95% (LCB) para todos os grupos de tratamento substanciou a eficácia dos Grupos I e II comparado com os ganhos de CAL observados em seis (6) meses para EMDOGAIN® e PEPGEN P-15®.
Além dos benefícios clínicos observados de CAL, as análises radiográficas que incluem Crescimento Ósseo Linear (LBG) e Percentagem de Enchimento Ósseo (% de BF), estatisticamente revelaram melhora signi-ficante em ganho ósseo para os Grupos I e II vs Grupo III. O % de BF foi definido como a porcentagem do defeito ósseo original enchido com osso novo como radiograficamente medido. LBG mostrou melhora significante no Grupo I (2,5 mm) quando comparado com o Grupo III (0,9 mm, p < 0,001). LBG também foi significante para o Grupo II (1,5 mm) quando comparado com o Grupo III (p= 0,021). A porcentagem de enchimento ósseo (% de BF) foi aumentada significantemente em seis meses pós-cirúrgico no Grupo I (56%) e Grupo II (34%) quando comparada com o Grupo III (18%), para um p <0,001 e p= 0,019, respectivamente. A ligação menor a 95% do intervalo de confidência em seis meses pós-cirurgia, para ambos crescimento ósseo linear e % de enchimento ósseo, substanciou a eficácia dos Grupos I e II comparada com os resultados radiográficos publicados para DFDBA, o material empregado mais amplamente para procedimentos de enxertos periodontais.
Em três meses, houve significantemente menos Recessão Gen-gival (GR) (p=0,041) para o Grupo I comparado com o Grupo III de acordo com o efeito benéfico observado com CAL. Nenhuma diferença estatisticamente significante foi observada em PDR e GR em seis meses. A análise descritiva do número de sítios que exibem cura de ferida completa (WH) em três semanas revelou melhoras no Grupo I (72%) vs. Grupo II (60%) e Grupo III (55%), indicando uma tendência melhorada à cura.
Para avaliar o efeito benéfico cumulativo para resultados radio-gráficos clínicos, uma análise da eficácia do compósito foi realizada para determinar a porcentagem de pacientes com um resultado bem sucedido como definido por CAL > 2,7mm e LBG > 1,1 mm em seis (6) meses. Os pontos de referência de CAL e LBG de sucesso foram estabelecidos pelos níveis médios alcançados por estes parâmetros pelos enxertos implantados, como identificado na seção "Medição da Eficácia" acima. Os resultados mostraram que 61,7% dos pacientes do Grupo I e 37,9% dos pacientes do Grupo II alcançaram ou excederam o ponto de referência do compósito para sucesso comparado com 30,4% dos pacientes do Grupo III, resultando em um benefício estatisticamente significante do Grupo I vs. Grupo III (p<0,001). O % de BF revelou benefícios similares para o Grupo I (70,0%) vs. Grupo III (44,6%) para valor p de 0,003.
Em resumo, o Grupo I obteve resultados estatisticamente benéficos para CAL e GR em três (3) meses bem como LBG e % de BF em seis (6) meses, comparado com o grupo de controle ativo de β-TCP sozinho (Grupo III). A significância clínica destes resultados é também confirmada por comparação para controles históricos. É concluído que o material de enxerto contendo PDGF foi mostrado alcançar eficácia clínica e radiográfica por seis meses para o tratamento de defeitos ósseos periodontais.
Tabela 5: Sumário da Eficácia do Enxerto de PDGF O material de enxerto (isto é, β-TCP) contendo PDGF em 0,3 mg/mL e em 1,0 mg/mL foi mostrado ser seguro e eficaz ria restauração de osso alveolar e ligamento clínico ao redor dos dentes com periodontite moderada a avançada em uma grande experiência clínica aleatorizada que envolve 180 indivíduos estudados durante até 6 meses. Estas conclusões são com base em medições radiográficas e clínicas validadas como resumido abaixo.
De acordo com os dados de biocompatibiiidade do material de enxerto contendo PDGF, descrito acima, e o uso seguro histórico de cada componente individual (isto é, β-TCP sozinho ou PDGF sozinho), o estudo não revelou nenhuma evidência de efeitos adversos ou sistêmicos ou locais. Não houve nenhum resultado adverso atribuível ao material de enxerto, que descobriu-se ser seguro.
Conclusão Descobriu-se que o implante de β-TCP contendo PDGF em 0,3 mg/mL ou 1,0 mg/mL é um tratamento eficaz para a restauração do nível de ligação de osso e tecido mole como mostrado por CAL significantemente melhorado em 3 meses comparado com o controle ativo. Nossas descobertas também são de acordo com a análise de AUC que mostrou uma melhora no ganho de CAL entre o valor de referência e seis meses. Descobriu-se também que o implante de β-TCP que contém PDGF em ou 0,3 mg/mL ou 1,0 mg/mL é um tratamento eficaz com base no % de BF e LBG significantemente melhorado comparado com o controle ativo. Os resultados clínicos significantemente melhorados como mostrado pela análise do compósito de ambas medições de tecido mole e duro também comparados com o controle ativo de β-TCP sozinho também demonstram a eficácia do protocolo de tratamento descrito acima. Finalmente, descobriu-se que os resultados da administração de β-TCP contendo PDGF em ou 0,3 mg/mL ou 1,0 mg/mL excedem os níveis estabelecidos de eficácia tanto clinicamente quanto radio-graficamente.
Os resultados desta experiência junto com os dados confirmado-res e extensos de estudos com humanos e animais in vitro, demonstram que o material de enxerto contendo PDGF estimula a regeneração do tecido duro e mole em defeitos periodontais, embora os efeitos fossem mais significan-tes quando PDGF na faixa de 0,1 a 1,0 mg/mL (por exemplo, 0,1 mg/mL, 0,3 mg/mL ou 1,0 mg/mL) fosse administrado no material de enxerto. Além disso, o PDGF administrado no material de enxerto na quantidade de 0,3 mg/mL regenerou eficazmente o osso e tecido mole.
Outras modalidades incluem-se nas seguintes reivindicações.

Claims (23)

1. Material de implante, caracterizado pelo fato de que consiste em: i) fosfato de cálcio poroso, ou ii) colágeno e fosfato de cálcio poroso; tendo incorporado no mesmo um líquido consistindo em fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF), em uma concentração na faixa de cerca de 0,1mg/ml_ a cerca de 1,0mg/ml_, em tampão, em que o fosfato de cálcio apresenta poros inter-conectados, porosidade maior que 40%, e consiste em partículas na faixa de cerca de 100 mícrons a cerca de 5.000 mícrons de tamanho.
2. Material de implante de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que o fosfato de cálcio é capaz de absorver uma quantidade do líquido consistindo em PDGF que é igual a pelo menos cerca de 25% do próprio peso do fosfato de cálcio.
3. Material de implante de acordo com a reivindicação 1 ou 2, caracterizado pelo fato de que a concentração de PDGF é igual ou inferior que cerca de 0,3mg/ml_.
4. Material de implante de acordo com qualquer uma das reiivndica-ções 1 a 3, caracterizado pelo fato de que PDGF tem uma concentração de cerca de 0,3mg/ml_, em tampão, em que o fosfato de cálcio é capaz de absorver uma quantidade do líquido consistindo em PDGF que é igual a pelo menos cerca de 25% do próprio peso do fosfato de cálcio.
5. Material de implante de acordo com qualquer uma das reiivndica-ções 1 a 4, caracterizado pelo fato de que o material de implante consiste de fosfato de cálcio poroso.
6. Material de implante de acordo com qualquer uma das reiivndica-ções 1 a 4, caracterizado pelo fato de que o material de implante consiste de colágeno e fosfato de cálcio poroso.
7. Material de implante de acordo com a reivindicação 5 ou 6, caracterizado pelo fato de que o fosfato de cálcio é β-fosfato de tricálcio.
8. Material de implante de acordo com qualquer uma das reiivndica-ções 1 a 7, caracterizado pelo fato de que PDGF é PDGF humano recombinante.
9. Material de implante de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que PDGF tem concentração na faixa de cerca de 0,2mg/mL a cerca de 0,75mg/ml_.
10. Material de implante de acordo com qualquer uma das reiivndica-ções 1 a 9, caracterizado pelo fato de que o fosfato de cálcio compreende partículas na faixa de cerca de 250 mícrons a cerca de 2.000 mícrons de tamanho.
11. Uso de fosfato de cálcio poroso, caracterizado pelo fato de que é na preparação de material de implante para a promoção do crescimento dos ossos, periodôntio, ligamento ou cartilagem em mamíferos, em que o referido fosfato de cálcio poroso tem incorporado no mesmo um líquido consistindo em fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF), em uma concentração na faixa de cerca de 0,1mg/ml_ a cerca de 1,0mg/ml_, em tampão, apresenta poros interconectados e consiste em partículas na faixa de cerca de 100 mícrons a cerca de 5.000 mícrons de tamanho.
12. Uso de acordo com a reivindicação 11, caracterizado pelo fato de que o fosfato de cálcio tem porosidade maior que 40%.
13. Uso de acordo com a reivindicação 11 ou 12, caracterizado pelo fato de que o fosfato de cálcio tem poros interconectados.
14. Uso de acordo com qualquer uma das reiivndicações 11 a 13, caracterizado pelo fato de que o fosfato de cálcio compreende β-TCP com tamanho de partícula de cerca de 250 mícrons a cerca de 2.000 mícrons.
15. Uso de acordo com qualquer uma das reiivndicações 11 a 14, caracterizado pelo fato de que compreende ainda colágeno.
16. Material de implante, caracterizado pelo fato de que consiste em: i) aloenxerto, ou ii) colágeno e aloenxerto; tendo incorporado no mesmo um líquido consistindo em fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF), em uma concentração na faixa de cerca de 0,1mg/ml_ a cerca de 1,0mg/ml_, em tampão, em que o aloenxerto apresenta poros interconectados, porosidade maior que 40%, e consiste em partículas na faixa de cerca de 100 mícrons a cerca de 5.000 mícrons de tamanho.
17. Material de implante de acordo com a reivindicação 16, caracterizado pelo fato de que o aloenxerto é capaz de absorver uma quantidade do líquido consistindo em PDGF que é igual a pelo menos cerca de 25% do próprio peso do aloenxerto.
18, Material de implante de acordo oom a reivindicação 16 ou 17, caracterizado pelo fato de que PDGF tem uma concentração que é igual ou inferior que cerca de 0,3mgãnL, em tampão, em que o aloenxerto apresenta poros interco-nectados,
19, Uso de aloenxerto, caracterizado pelo fato de que é na preparação de material de implante para a promoção do crescimento dos ossos, periodôntio, ligamento ou cartilagem em mamíferos, em que o referido aloenxerto tem incorporado no mesmo um líquido consistindo em fator de crescimento derivado de plaque-ta (PDGF}, em uma concentração na faixa de cerca de 0,1mg/mL a cerca de 1,0mg/mL, em tampão, apresenta poros interconectados e consiste em partículas na faixa de cerca de 100 mícrons a cerca de 5 000 mícrons de tamanho.
20. Uso de acordo com a reivindicação 19, caracterizado pelo fato de que o aloenxerto tem porosidade maior que 40%.
21, Uso de acordo com a reivindicação 19 ou 20, caracterizado pelo fato de que o aloenxerto consiste em partículas na faixa de cerca de 250 mícrons a cerca de 2.000 mícrons de tamanho.
22. Uso de acordo com qualquer uma das reivindicações 19 a 21, caracterizado pelo fato de que compreende ainda colágeno.
23. Método de preparação de material de implante, caracterizado pelo fato de que compreende saturar material de implante poroso em líquido estéril consistindo em fator de crescimento derivado de plaqueta (PDGF), em uma concentração na faixa de cerca de 0,1 mg/mL a cerca de 1,0mg/mL, em tampão, em que o material de implante consiste em (i) fosfato de cálcio poroso, (ii) colágeno e fosfato de cálcio poroso, (iii) aloenxerto ou (iv) colágeno e aloenxerto, e em que o fosfato de cálcio poroso ou o aloenxerto apresenta poros interconectados, tem porosidade maior que 40% e consiste em partículas na faixa de cerca de 100 mícrons a cerca de 5.000 mícrons de tamanho.
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Families Citing this family (96)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20040081704A1 (en) 1998-02-13 2004-04-29 Centerpulse Biologics Inc. Implantable putty material
US20020114795A1 (en) * 2000-12-22 2002-08-22 Thorne Kevin J. Composition and process for bone growth and repair
US7166133B2 (en) 2002-06-13 2007-01-23 Kensey Nash Corporation Devices and methods for treating defects in the tissue of a living being
US7473678B2 (en) 2004-10-14 2009-01-06 Biomimetic Therapeutics, Inc. Platelet-derived growth factor compositions and methods of use thereof
EP1951327A2 (en) 2005-11-17 2008-08-06 Biomimetic Therapeutics, Inc. Maxillofacial bone augmentation using rhpdgf-bb and a biocompatible matrix
EP2311505B1 (en) 2006-02-09 2013-11-06 BioMimetic Therapeutics, LLC Compositions and methods for treating bone
AU2007269712B2 (en) * 2006-06-30 2013-02-07 Biomimetic Therapeutics, Llc PDGF-biomatrix compositions and methods for treating rotator cuff injuries
US9161967B2 (en) 2006-06-30 2015-10-20 Biomimetic Therapeutics, Llc Compositions and methods for treating the vertebral column
AU2013203287B2 (en) * 2006-11-03 2015-12-17 Biomimetic Therapeutics, Llc. Compositions and methods for arthrodetic procedures
JP5552315B2 (ja) 2006-11-03 2014-07-16 バイオミメティック セラピューティクス, エルエルシー アースロデティック術のための組成物および方法
US7718616B2 (en) * 2006-12-21 2010-05-18 Zimmer Orthobiologics, Inc. Bone growth particles and osteoinductive composition thereof
US20080154372A1 (en) * 2006-12-21 2008-06-26 Peckham Steven M Osteochondral implant using a growth factor concentration gradient for repair of bone and cartilage tissue
US20080195476A1 (en) * 2007-02-09 2008-08-14 Marchese Michael A Abandonment remarketing system
US20100151025A1 (en) * 2007-02-20 2010-06-17 Biomimetic Therapeutics, Inc. Prevention and treatment for osteonecrosis and osteoradionecrosis of the jaw
FR2914191A1 (fr) * 2007-03-29 2008-10-03 Proteins & Peptides Man Composition angiogenique.
CA2685956A1 (en) * 2007-05-04 2008-11-13 Perth Bone & Tissue Bank A method for treating inflammation and controlled-release material capable of providing same
CN101820895A (zh) * 2007-06-04 2010-09-01 生物模拟治疗公司 用于治疗脊柱的组合物和方法
ES2327480B1 (es) 2007-06-15 2010-08-10 Bioiberica, S.A. "disacaridos para el tratamiento de tendones, ligamentos y huesos".
CN101772350A (zh) 2007-06-19 2010-07-07 巴克斯特国际公司 用于pdgf受控释放的纤维蛋白凝胶及其应用
EP2192907B1 (en) 2007-08-16 2018-04-18 Remedor Biomed Ltd. Erythropoietin and fibronectin compositions for therapeutic applications
WO2009093240A2 (en) * 2008-01-24 2009-07-30 Ademex Ltd. Erythropoietin and fibronectin compositions for bone regeneration
CN102014977B (zh) * 2008-02-07 2015-09-02 生物模拟治疗有限责任公司 用于牵引成骨术的组合物和方法
FR2933304A1 (fr) * 2008-07-07 2010-01-08 Adocia Composition synergique osteogenique
EA020753B1 (ru) 2008-06-16 2015-01-30 Бинд Терапьютикс, Инк. Терапевтические полимерные наночастицы, содержащие алкалоиды vinca, и их применение
US8613951B2 (en) 2008-06-16 2013-12-24 Bind Therapeutics, Inc. Therapeutic polymeric nanoparticles with mTor inhibitors and methods of making and using same
JP2012501965A (ja) 2008-06-16 2012-01-26 バインド バイオサイエンシズ インコーポレイテッド 薬剤を装填したポリマーナノ粒子及びその製造方法と使用方法
CN101357239B (zh) * 2008-08-29 2013-01-09 广东省人民医院 偏磷酸钙作为非硬组织工程材料的用途
NZ591338A (en) * 2008-09-09 2013-02-22 Biomimetic Therapeutics Inc Platelet-derived growth factor compositions and methods for the treatment of tendon and ligament injuries
US8563041B2 (en) * 2008-12-12 2013-10-22 Bind Therapeutics, Inc. Therapeutic particles suitable for parenteral administration and methods of making and using same
JP2012512175A (ja) * 2008-12-15 2012-05-31 バインド バイオサイエンシズ インコーポレイテッド 治療薬を徐放するための長時間循環性ナノ粒子
JP2012512728A (ja) * 2008-12-19 2012-06-07 バイオミメティック セラピューティクス, インコーポレイテッド 低減したプロテアーゼ活性を有する骨移植片ならびに選択方法および使用法
CN101486996B (zh) * 2009-02-06 2012-10-10 浙江大学 一种非动物源性细胞培养血清替代物及其应用
CA2754501A1 (en) * 2009-03-05 2010-09-10 Biomimetic Therapeutics, Inc. Platelet-derived growth factor compositions and methods for the treatment of osteochondral defects
US8298567B2 (en) * 2009-04-22 2012-10-30 Michigan Molecular Institute Hyperbranched polyurea delivery system for binding and release of growth factors
DE102009024616A1 (de) * 2009-06-08 2010-12-23 Telos Gmbh Sterilisierbare Implantatbeschichtung und Verfahren zu deren Herstellung
EA036522B1 (ru) 2009-12-11 2020-11-19 Пфайзер Инк. Фармацевтическая композиция, пригодная для лиофилизации, содержащая множество терапевтических частиц
EA201290499A1 (ru) 2009-12-15 2013-01-30 Байнд Байосайенсиз, Инк. Композиции терапевтических полимерных наночастиц с высокой температурой стеклования и высокомолекулярными сополимерами
CN107080834A (zh) 2010-02-22 2017-08-22 生物模拟治疗有限责任公司 用于治疗腱病的血小板衍生生长因子组合物和方法
US10130736B1 (en) 2010-05-14 2018-11-20 Musculoskeletal Transplant Foundation Tissue-derived tissuegenic implants, and methods of fabricating and using same
US9352003B1 (en) 2010-05-14 2016-05-31 Musculoskeletal Transplant Foundation Tissue-derived tissuegenic implants, and methods of fabricating and using same
CN102397534B (zh) * 2010-09-07 2013-10-23 中国人民解放军总医院 胰岛素在制备促进颌骨组织愈合的药物中的用途
WO2012068135A1 (en) 2010-11-15 2012-05-24 Zimmer Orthobiologics, Inc. Bone void fillers
JP6082901B2 (ja) * 2011-01-31 2017-02-22 オリンパス株式会社 ワクチン・アジュバント
JP5990752B2 (ja) * 2011-01-31 2016-09-14 オリンパス株式会社 抗体療法の効果増強剤
CN102652833B (zh) * 2011-03-02 2013-07-31 中国科学院过程工程研究所 一种胃部靶向药物载体及其制备方法
US9265830B2 (en) 2011-04-20 2016-02-23 Warsaw Orthopedic, Inc. Implantable compositions and methods for preparing the same
WO2013062994A1 (en) 2011-10-25 2013-05-02 Biomimetic Therapeutics, Inc. Compositions and methods for treating full thickness burn injuries
US20130108683A1 (en) 2011-10-25 2013-05-02 Biomimetic Therapeutics, Inc. Compositions and methods for treating partial and full thickness wounds and injuries
US10207027B2 (en) 2012-06-11 2019-02-19 Globus Medical, Inc. Bioactive bone graft substitutes
JP6356678B2 (ja) 2012-09-17 2018-07-11 ファイザー・インク 治療用ナノ粒子を製造する方法
CN104994886B (zh) * 2012-12-20 2017-10-03 奥姆里克斯生物药品有限公司 病毒灭活的生物混合物
CN103961693B (zh) * 2013-01-24 2016-09-14 熊慧 一种恶性肿瘤治疗性疫苗及其组合物
HK1194912A2 (en) * 2013-09-17 2014-10-24 Bestop Group Holdings Ltd Growth factor concentrate and the use thereof
US9539286B2 (en) 2013-10-18 2017-01-10 Globus Medical, Inc. Bone grafts including osteogenic stem cells, and methods relating to the same
US9486483B2 (en) 2013-10-18 2016-11-08 Globus Medical, Inc. Bone grafts including osteogenic stem cells, and methods relating to the same
US20150140096A1 (en) * 2013-11-21 2015-05-21 Vivex Biomedical Inc. Composition and method of preparation of bone allograft from endosteal portion of bone and isolated bone periosteum
US9579421B2 (en) 2014-02-07 2017-02-28 Globus Medical Inc. Bone grafts and methods of making and using bone grafts
US9463264B2 (en) 2014-02-11 2016-10-11 Globus Medical, Inc. Bone grafts and methods of making and using bone grafts
AP2016009494A0 (en) 2014-03-14 2016-10-31 Pfizer Therapeutic nanoparticles comprising a therapeutic agent and methods of making and using same
HUE055062T2 (hu) * 2014-05-30 2021-10-28 Univ New York State Res Found Készítmények és eljárások csontképzõdés elõsegítésére
CN104147595A (zh) * 2014-08-29 2014-11-19 姜红江 自体细胞生长因子制剂、制备方法及其制备用途
MX2017004520A (es) 2014-10-14 2018-03-15 Lynch Samuel Composiciones para tratar heridas.
CN104587525A (zh) * 2014-12-19 2015-05-06 深圳中元生物科技有限公司 包含血小板及透明质酸的支架及其制备方法
CN105732809B (zh) * 2014-12-31 2019-08-06 广东众生药业股份有限公司 抗血小板衍生因子的抗体
CN104548212B (zh) * 2014-12-31 2018-05-11 新科沃再生医学(苏州)有限公司 一种促进牙髓及牙本质再生的组合物
CA2986702C (en) 2015-05-21 2023-04-04 David Wang Modified demineralized cortical bone fibers
US10016529B2 (en) 2015-06-10 2018-07-10 Globus Medical, Inc. Biomaterial compositions, implants, and methods of making the same
US11426489B2 (en) 2015-06-10 2022-08-30 Globus Medical, Inc. Biomaterial compositions, implants, and methods of making the same
CN104983672B (zh) * 2015-06-26 2017-11-14 青岛大学 一种温敏溶胶的制备方法
CN105153612A (zh) * 2015-08-31 2015-12-16 苏州莱特复合材料有限公司 用于矫形支架的复合材料及其制备方法
WO2017214631A1 (en) * 2016-06-10 2017-12-14 Liden Brock Systems and methods for treating a wound with a wound packing
CN106754658A (zh) * 2016-12-22 2017-05-31 江西宜信堂医疗科技有限公司 一种培养牙髓干细胞的培养基及其制备方法
CN106754678A (zh) * 2016-12-24 2017-05-31 叶宗耀 一种适用于牙髓干细胞体外培养的培养基及其制备方法
AU2018249816A1 (en) * 2017-04-03 2019-10-17 Wisconsin Alumni Research Foundation Mineral coated microparticles for sustained delivery of biologically active molecules
CN107349468B (zh) * 2017-07-02 2020-12-04 江西瑞济生物工程技术股份有限公司 一种羊膜干细胞凝胶及其制备方法和应用
CN107456607A (zh) * 2017-07-03 2017-12-12 广州医科大学附属口腔医院 一种双功能化的新型“sandwich”结构的引导牙周组织再生膜及其制备方法和应用
CN107670103A (zh) * 2017-09-15 2018-02-09 天津大学 聚乙烯吡络烷酮改性的骨水泥及制备方法
KR20200136978A (ko) * 2018-03-28 2020-12-08 보드 오브 리전츠, 더 유니버시티 오브 텍사스 시스템 치료제의 표적화된 전달을 위한 엑소좀의 용도
CN108653817B (zh) * 2018-05-24 2021-02-02 上海其胜生物制剂有限公司 一种新型胶原刺激剂的制备方法
AU2020239268A1 (en) * 2019-03-14 2021-10-21 Biomimetic Therapeutics, Llc Platelet-derived growth factor formulations for enhancing bone fusion
US20220249554A1 (en) * 2019-07-12 2022-08-11 Vasanthi PALANIVEL Compositions and methods for managing female infertility
WO2021009662A1 (en) * 2019-07-12 2021-01-21 Vasanthi Palanivel Compositions for treatment of infertility caused by poor semen quality, methods for preparing the same and applications thereof
WO2021009660A1 (en) * 2019-07-12 2021-01-21 Vasanthi Palanivel Composition and methods for improving thickness and receptivity of endometrial lining
WO2021009659A1 (en) * 2019-07-12 2021-01-21 Vasanthi Palanivel Compositions for treatment of erectile dysfunction, methods for preparing the same and applications thereof
US20220313784A1 (en) * 2019-07-12 2022-10-06 Vasanthi PALANIVEL Compositions for treatment of asherman's syndrome, methods for preparing the same and applications thereof
WO2021009663A1 (en) * 2019-07-15 2021-01-21 Vasanthi Palanivel Compositions for treatment of azoospermia, methods for preparing the same and applications thereof
CN111569004B (zh) * 2020-06-15 2022-07-08 钟瑾 一种用于慢性牙周炎的药物凝胶及其制备方法与用途
CN111533825B (zh) * 2020-06-17 2022-03-01 昆山京昆油田化学科技有限公司 一种氨基葡萄糖接枝海藻酸钠衍生物及其制备方法和应用
US11896736B2 (en) 2020-07-13 2024-02-13 Globus Medical, Inc Biomaterial implants and methods of making the same
CN112121229B (zh) * 2020-09-27 2022-09-09 天晴干细胞股份有限公司 一种抑制炎症和促进牙槽骨修复的组织工程材料及其制备方法和应用
JP7025070B1 (ja) 2021-05-14 2022-02-24 セルソース株式会社 血液由来成長因子含有組成物及びその調製方法
CN113476666B (zh) * 2021-06-28 2022-09-09 苏州大学附属第一医院 一种可注射型长效缓释褪黑素的关节软骨修复材料、制备方法及其应用
US11890154B2 (en) 2021-06-30 2024-02-06 Khalid AL HEZAIMI Pulp capping methods
CN113827778B (zh) * 2021-11-03 2022-10-21 浙江赛灵特医药科技有限公司 一种注射式骨修复剂及其应用
CN115006609A (zh) * 2022-05-24 2022-09-06 曹建中 一种适用于骨折内固定术前制作的可降解材料及其制备方法及应用
CN115058053B (zh) * 2022-06-30 2023-06-27 浙江大学滨江研究院 一种基于明胶衍生物冷冻大孔凝胶的制备方法及其应用

Family Cites Families (270)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US652473A (en) * 1900-01-10 1900-06-26 Allan A Cole Trunk-brace.
US2124316A (en) * 1937-10-23 1938-07-19 Schonfeld Paul Warp fabric
US3943072A (en) * 1971-12-15 1976-03-09 United Kingdom Atomic Energy Authority Separation of molecules
USRE33221E (en) * 1982-04-29 1990-05-22 American Dental Association Health Foundation Dental restorative cement pastes
USRE33161E (en) * 1982-04-29 1990-02-06 American Dental Association Health Foundation Combinations of sparingly soluble calcium phosphates in slurries and pastes as mineralizers and cements
US4654314A (en) 1983-07-09 1987-03-31 Sumitomo Cement Co., Ltd. Porous ceramic material and processes for preparing same
US5187263A (en) 1984-10-12 1993-02-16 Zymogenetics, Inc. Expression of biologically active PDGE analogs in eucaryotic cells
US4766073A (en) * 1985-02-25 1988-08-23 Zymogenetics Inc. Expression of biologically active PDGF analogs in eucaryotic cells
US4889919A (en) * 1986-08-13 1989-12-26 Zymogenetics, Inc. Biologically active PDGF derived A-chain homodimers
US5165938A (en) 1984-11-29 1992-11-24 Regents Of The University Of Minnesota Wound healing agents derived from platelets
US5629191A (en) 1985-01-03 1997-05-13 Integra Lifesciences Corporation Method of making a porous matrix particle
US5516896A (en) 1985-02-25 1996-05-14 Zymogenetics, Inc. Biologically active B-chain homodimers
US5045633A (en) 1985-02-25 1991-09-03 Zymogenetics, Inc. Expression of biologically active PDGF analogs in eucaryotic cells
US5113354B1 (en) * 1986-02-07 1993-11-09 System for optimizing data transmissions associated with addressable buffer devices
US5106748A (en) * 1986-07-01 1992-04-21 Genetics Institute, Inc. Dna sequences encoding 5 proteins
US5108922A (en) * 1986-07-01 1992-04-28 Genetics Institute, Inc. DNA sequences encoding BMP-1 products
ZA874681B (en) * 1986-07-01 1988-04-27 Genetics Inst Novel osteoinductive factors
US5013649A (en) * 1986-07-01 1991-05-07 Genetics Institute, Inc. DNA sequences encoding osteoinductive products
US5187076A (en) * 1986-07-01 1993-02-16 Genetics Institute, Inc. DNA sequences encoding BMP-6 proteins
KR960005708B1 (ko) 1986-11-14 1996-05-01 인스티튜트 오브 몰레큘러 바이올로지, 인코오포레이티드 외상 치료 및 뼈 재생용 조성물
US5019559A (en) * 1986-11-14 1991-05-28 President And Fellows Of Harvard College Wound healing using PDGF and IGF-II
US5124316A (en) * 1986-11-14 1992-06-23 President And Fellows Of Harvard College Method for periodontal regeneration
CA1322714C (en) * 1986-11-14 1993-10-05 Harry N. Antoniades Wound healing and bone regeneration
US5219759A (en) * 1987-04-22 1993-06-15 Chiron Corporation Recombinant DNA encoding PDGF A-chain polypeptide and expression vectors
US5457093A (en) * 1987-09-18 1995-10-10 Ethicon, Inc. Gel formulations containing growth factors
US4874746A (en) 1987-12-22 1989-10-17 Institute Of Molecular Biology, Inc. Wound headling composition of TGF-alpha and PDGF
US5759815A (en) 1988-02-11 1998-06-02 Creative Biomolecules, Inc. Production of platelet derived growth factor (PDGF) an muteins thereof
US4975526A (en) 1989-02-23 1990-12-04 Creative Biomolecules, Inc. Bone collagen matrix for zenogenic implants
US6586388B2 (en) * 1988-04-08 2003-07-01 Stryker Corporation Method of using recombinant osteogenic protein to repair bone or cartilage defects
US5129905A (en) * 1988-04-20 1992-07-14 Norian Corporation Methods for in situ prepared calcium phosphate minerals
US5962028A (en) 1988-04-20 1999-10-05 Norian Corporation Carbonated hydroxyapatite compositions and uses
US5053212A (en) 1988-04-20 1991-10-01 Norian Corporation Intimate mixture of calcium and phosphate sources as precursor to hydroxyapatite
US4904259A (en) 1988-04-29 1990-02-27 Samuel Itay Compositions and methods for repair of cartilage and bone
US5219576A (en) * 1988-06-30 1993-06-15 Collagen Corporation Collagen wound healing matrices and process for their production
US5034375A (en) * 1988-08-10 1991-07-23 Institute Of Molecular Biology, Inc. Process of wound healing using PDGF and EGF
US5422340A (en) * 1989-09-01 1995-06-06 Ammann; Arthur J. TGF-βformulation for inducing bone growth
US5035887A (en) 1989-09-07 1991-07-30 Institute Of Moelcular Biology, Inc. Wound healing composition of IL-1 and PDGF or IGF-1
US5599558A (en) 1989-09-15 1997-02-04 Curative Technologies, Inc. Selecting amounts of platelet releasate for efficacious treatment of tissue
US5112354A (en) 1989-11-16 1992-05-12 Northwestern University Bone allograft material and method
US5011910A (en) 1989-12-28 1991-04-30 Washington University Reagent and method for determining activity of retroviral protease
US5071655A (en) 1990-01-12 1991-12-10 Baylink David J Pharmaceutical combination for treatment of bone-wasting diseases
EP0513201A1 (en) 1990-02-01 1992-11-19 University Of South Florida Leukocyte-derived growth factor
TW199858B (pt) * 1990-03-30 1993-02-11 Fujirebio Kk
WO1991015231A1 (en) 1990-04-10 1991-10-17 Institute Of Molecular Biology, Inc. Wound healing
ES2168091T3 (es) 1990-05-16 2002-06-01 Genetics Inst Proteinas de induccion osea y cartilaginosa.
EP1142581A3 (en) 1990-11-27 2002-09-11 American National Red Cross Tissue sealant and growth factor containing compositions that promote accelerated wound healing
US5853746A (en) 1991-01-31 1998-12-29 Robert Francis Shaw Methods and compositions for the treatment and repair of defects or lesions in cartilage or bone using functional barrier
US5149691A (en) * 1991-03-12 1992-09-22 Creative Biomolecules, Inc. Issue repair and regeneration through the use of platelet derived growth factor (pdgf) in combination with dexamethasone
DE4120325A1 (de) * 1991-06-20 1992-12-24 Merck Patent Gmbh Implantatwerkstoff
CA2108770C (en) 1991-06-25 2007-04-03 John M. Wozney Bmp-9 compositions
US5837258A (en) 1991-08-30 1998-11-17 University Of South Florida Induction of tissue, bone or cartilage formation using connective tissue growth factor
US5270300A (en) 1991-09-06 1993-12-14 Robert Francis Shaw Methods and compositions for the treatment and repair of defects or lesions in cartilage or bone
ATE238417T1 (de) 1991-11-04 2003-05-15 Inst Genetics Llc Rekombinante knochenmorphogenetische protein heterodimere, zusammensetzungen und verfahren zur verwendung
WO1993008825A1 (en) 1991-11-04 1993-05-13 Zymogenetics, Inc. Pdgf gel formulation
DK0625989T3 (da) 1992-02-12 2000-06-26 Bioph Biotech Entw Pharm Gmbh DNA-sekvenser kodende for hidtil ukendte vækst-/differentieringsfaktorer
WO1993020859A1 (en) 1992-04-20 1993-10-28 Board Of Regents Of The University Of Washington Sustained release compositions for delivery of growth factors
IL106278A0 (en) 1992-07-13 1993-11-15 Sumitomo Metal Ind Bone formation-inducing protein
ES2149823T3 (es) 1992-09-03 2000-11-16 Univ California Factor y composiciones que afectan al tejido dorsal.
EP0678101A4 (en) 1993-01-12 1997-07-16 Univ Johns Hopkins Med GROWTH DIFFERENTIATION FACTOR-9.
CA2153652A1 (en) 1993-01-12 1994-07-21 Se-Jin Lee Growth differentiation factor-3
WO1994015949A1 (en) 1993-01-12 1994-07-21 Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-5
WO1994021681A1 (en) 1993-03-19 1994-09-29 Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-8
CN1104257C (zh) 1993-03-29 2003-04-02 津莫吉尼蒂克斯公司 含pdgf和维生素d的刺激成骨细胞生长的组合物
WO1994026892A1 (en) 1993-05-12 1994-11-24 Genetics Institute, Inc. Bmp-11 compositions
EP0698095B1 (en) 1993-05-12 2004-04-28 Genetics Institute, LLC Bmp-10 compositions
WO1994028889A1 (en) 1993-06-08 1994-12-22 Neogenix, Inc. Purified natural and synthetic compounds for the treatment of osteoarthritis
CA2165778A1 (en) 1993-07-09 1995-01-19 Se-Jin Lee Growth differentiation factor-7
JPH09503903A (ja) 1993-07-09 1997-04-22 ザ ジョーンズ ホプキンス ユニバーシティー スクール オブ メディシン 増殖分化因子−6
US5531794A (en) * 1993-09-13 1996-07-02 Asahi Kogaku Kogyo Kabushiki Kaisha Ceramic device providing an environment for the promotion and formation of new bone
US6291206B1 (en) 1993-09-17 2001-09-18 Genetics Institute, Inc. BMP receptor proteins
US6204047B1 (en) 1993-10-08 2001-03-20 The Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-10
US5518680A (en) * 1993-10-18 1996-05-21 Massachusetts Institute Of Technology Tissue regeneration matrices by solid free form fabrication techniques
DE69434651T2 (de) 1993-12-07 2007-03-08 Genetics Institute, Inc., Cambridge Bmp-12, bmp-13 und diese enthaltende sehne-induzierende zusammensetzungen
JP3362267B2 (ja) * 1993-12-29 2003-01-07 日本特殊陶業株式会社 生体インプラント材料及びその製造方法
NZ278765A (en) 1993-12-30 1998-05-27 Harvard College Vertebrate proteins involved in spatial arrangements of differentiated tissues called hedgehog proteins, their production and use
US5460962A (en) 1994-01-04 1995-10-24 Organogenesis Inc. Peracetic acid sterilization of collagen or collagenous tissue
JPH07250688A (ja) 1994-01-28 1995-10-03 Sagami Chem Res Center TGF−βスーパーファミリー蛋白質をコードするヒト新規cDNA
AU1743495A (en) 1994-02-04 1995-08-21 Cell Therapeutics, Inc. Composition for wound healing, neuron growth and vascularization
US5942496A (en) 1994-02-18 1999-08-24 The Regent Of The University Of Michigan Methods and compositions for multiple gene transfer into bone cells
CA2187355C (en) 1994-04-08 2009-10-13 Richard L. Dunn An adjunctive polymer system for use with medical device
WO1995028950A1 (en) * 1994-04-20 1995-11-02 Institute Of Molecular Biology, Inc. Administration of platelet-derived growth factor and bone seeking drugs for osteoporosis and bone regeneration
US7963997B2 (en) * 2002-07-19 2011-06-21 Kensey Nash Corporation Device for regeneration of articular cartilage and other tissue
WO1996001845A1 (en) 1994-07-08 1996-01-25 The Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-11
WO1996002559A1 (en) 1994-07-13 1996-02-01 The Johns Hopkins University School Of Medicine Growth differentiation factor-12
US6180606B1 (en) * 1994-09-28 2001-01-30 Gensci Orthobiologics, Inc. Compositions with enhanced osteogenic potential, methods for making the same and uses thereof
US5651766A (en) 1995-06-07 1997-07-29 Transfusion Technologies Corporation Blood collection and separation system
WO1996013226A1 (en) 1994-10-31 1996-05-09 Sepracor Inc. Method for the treatment of periodontal disease and a pharmaceutical composition useful in said method
US6281332B1 (en) 1994-12-02 2001-08-28 The Johns Hopkins University School Of Medicine Hedgehog-derived polypeptides
US5614206A (en) * 1995-03-07 1997-03-25 Wright Medical Technology, Inc. Controlled dissolution pellet containing calcium sulfate
US5635372A (en) * 1995-05-18 1997-06-03 Genetics Institute, Inc. BMP-15 compositions
US6027742A (en) 1995-05-19 2000-02-22 Etex Corporation Bioresorbable ceramic composites
US6541037B1 (en) * 1995-05-19 2003-04-01 Etex Corporation Delivery vehicle
US6287341B1 (en) * 1995-05-19 2001-09-11 Etex Corporation Orthopedic and dental ceramic implants
US5676976A (en) * 1995-05-19 1997-10-14 Etex Corporation Synthesis of reactive amorphous calcium phosphates
ES2293137T3 (es) * 1995-10-11 2008-03-16 Novartis Vaccines And Diagnostics, Inc. Combinacion de pdgf, kgf,igf e igfbp para curacion de heridas.
US5776193A (en) 1995-10-16 1998-07-07 Orquest, Inc. Bone grafting matrix
US5783217A (en) * 1995-11-07 1998-07-21 Etex Corporation Low temperature calcium phosphate apatite and a method of its manufacture
US5752974A (en) * 1995-12-18 1998-05-19 Collagen Corporation Injectable or implantable biomaterials for filling or blocking lumens and voids of the body
US5747273A (en) * 1996-05-07 1998-05-05 Diagnostic Systems Laboratories, Inc. Immunoassay of total insulin-like growth factor binding protein-1
AU2759397A (en) * 1996-05-28 1998-01-05 1218122 Ontario Inc. Resorbable implant biomaterial made of condensed calcium phosphate particles
FR2749756B1 (fr) * 1996-06-14 1998-09-11 Bioland Procede de preparation d'un materiau composite implantable, materiau obtenu, implant comprenant ce materiau et kit de mise en oeuvre
US5965403A (en) 1996-09-18 1999-10-12 Genetics Institute, Inc. Nucleic acids encoding bone morphogenic protein-16 (BMP-16)
DE69738398T2 (de) 1996-10-16 2008-12-04 Etex Corp., Cambridge Biokeramische zusammensetzung
US6037519A (en) 1997-10-20 2000-03-14 Sdgi Holdings, Inc. Ceramic fusion implants and compositions
DE19646782C2 (de) 1996-11-13 2000-05-25 Merck Patent Gmbh Bioresorbierbare Polymerisationsprodukte aus strahlungshärtbaren Bindemittelsystemen
ATE253120T1 (de) 1996-12-13 2003-11-15 Chiron Corp Verfahren zur expression von heterologen proteinen in hefe
US5866165A (en) 1997-01-15 1999-02-02 Orquest, Inc. Collagen-polysaccharide matrix for bone and cartilage repair
FR2758988B1 (fr) 1997-02-05 2000-01-21 S H Ind Procede d'elaboration de substituts osseux synthetiques d'architecture poreuse parfaitement maitrisee
EP2332564A1 (en) * 1997-02-07 2011-06-15 Stryker Corporation Matrix-free osteogenic devices, implants and methods thereof
WO1998038949A1 (en) * 1997-03-04 1998-09-11 Implico B.V. An artefact suitable for use as a bone implant
US20020098222A1 (en) * 1997-03-13 2002-07-25 John F. Wironen Bone paste
US7041641B2 (en) 1997-03-20 2006-05-09 Stryker Corporation Osteogenic devices and methods of use thereof for repair of endochondral bone and osteochondral defects
US20010016646A1 (en) * 1998-03-20 2001-08-23 David C. Rueger Osteogenic devices and methods of use thereof for repair of endochondral bone, osteochondral and chondral defects
JP3334558B2 (ja) * 1997-04-23 2002-10-15 富士レビオ株式会社 酵素免疫測定方法及び試験片
US20030032586A1 (en) 1997-05-15 2003-02-13 David C. Rueger Compositions for morphogen-induced osteogenesis
GB2325934A (en) * 1997-06-03 1998-12-09 Polybiomed Ltd Treating metal surfaces to enhance bio-compatibility and/or physical characteristics
US6063624A (en) 1997-06-09 2000-05-16 Baxter International Inc. Platelet suspensions and methods for resuspending platelets
US20010014682A1 (en) 1997-07-25 2001-08-16 Smithkline Beecham Corporation Fibrinogen receptor antagonists
DE69714035T2 (de) 1997-08-14 2003-03-06 Sulzer Innotec Ag Zusammensetzung und Vorrichtung zur Reparatur von Knorpelgewebe in vivo bestehend aus Nanokapseln mit osteoinduktiven und/oder chondroinduktiven Faktoren
US6136029A (en) 1997-10-01 2000-10-24 Phillips-Origen Ceramic Technology, Llc Bone substitute materials
US6090998A (en) 1997-10-27 2000-07-18 University Of Florida Segmentally demineralized bone implant
WO1999030726A1 (en) 1997-12-15 1999-06-24 Page Roy C Improved method for attaching dental and orthopedic implants, ligaments, and tendons to bone
US20020076429A1 (en) 1998-01-28 2002-06-20 John F. Wironen Bone paste subjected to irradiative and thermal treatment
US20020018796A1 (en) * 1998-01-28 2002-02-14 John F. Wironen Thermally sterilized bone paste
JP2000004875A (ja) 1998-06-23 2000-01-11 Teijin Ltd 増殖因子の産生誘導方法
SE514908C2 (sv) 1998-07-13 2001-05-14 Gs Dev Ab Medel för benrekonstruktion
DE69813908T2 (de) 1998-07-28 2004-02-05 Synthes Ag Chur, Chur Verwendung von kreatinsubstanzen zur behandlung von knochen- und knorpelzellen und geweben
US20030114936A1 (en) 1998-10-12 2003-06-19 Therics, Inc. Complex three-dimensional composite scaffold resistant to delimination
US6224635B1 (en) * 1998-11-06 2001-05-01 Hospital For Joint Diseases Implantation of surgical implants with calcium sulfate
US6663870B2 (en) * 1998-12-07 2003-12-16 Zymogenetics, Inc. Methods for promoting growth of bone using zvegf3
US6231528B1 (en) 1999-01-15 2001-05-15 Jonathan J. Kaufman Ultrasonic and growth factor bone-therapy: apparatus and method
EP1025871A1 (en) 1999-01-28 2000-08-09 F. Hoffmann-La Roche Ag Use of a melanoma inhibiting activity factor (MIA) for cartilage and bone repair
DE60006356T2 (de) 1999-02-04 2004-09-09 SDGI Holding, Inc., Wilmington Hochmineralisierte osteogene schwammzusammensetzungen und ihre verwendung
US6294187B1 (en) * 1999-02-23 2001-09-25 Osteotech, Inc. Load-bearing osteoimplant, method for its manufacture and method of repairing bone using same
BR0005368A (pt) * 1999-03-15 2001-01-09 Implant Innovations Inc Sistema de coleta de plaquetas
US6296602B1 (en) * 1999-03-17 2001-10-02 Transfusion Technologies Corporation Method for collecting platelets and other blood components from whole blood
AU4173000A (en) * 1999-03-19 2000-10-09 Regents Of The University Of Michigan, The Mineralization and cellular patterning on biomaterial surfaces
ES2424618T3 (es) * 1999-04-12 2013-10-07 Harvest Technologies Corporation Procedimiento y aparato para producir plasma rico en plaquetas y/o concentrado de plaquetas
SE515227C2 (sv) * 1999-04-28 2001-07-02 Bruce Medical Ab Kropp för åstadkommande av in- och tillväxt av benvävnad och/ eller bindväv och sätt för framställning av kroppen
US6468543B1 (en) * 1999-05-03 2002-10-22 Zymogenetics, Inc. Methods for promoting growth of bone using ZVEGF4
US6710025B1 (en) 1999-05-26 2004-03-23 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Treatment of damaged tissue using agents that modulate the activity of alpha-smooth muscle actin
US6312952B1 (en) 1999-05-27 2001-11-06 The Research Foundation Of State University Of New York In vitro cell culture device including cartilage and methods of using the same
DE19926083A1 (de) 1999-06-08 2000-12-14 Universitaetsklinikum Freiburg Biologisches Gelenkkonstrukt
US6429013B1 (en) * 1999-08-19 2002-08-06 Artecel Science, Inc. Use of adipose tissue-derived stromal cells for chondrocyte differentiation and cartilage repair
DE19940717A1 (de) * 1999-08-26 2001-03-01 Gerontocare Gmbh Resorblerbares Knochenersatz- und Knochenaufbaumaterial
US6280191B1 (en) 1999-09-03 2001-08-28 Christopher B. Gordon Distractor suitable for permanent implantation into bone
AU1430601A (en) 1999-11-02 2001-05-14 Eli Lilly And Company Methods of using lp8, a pdgf-related protein, to treat musculoskeletal disorders
JP4809963B2 (ja) * 1999-11-11 2011-11-09 オリンパス株式会社 骨補填材
US6451059B1 (en) * 1999-11-12 2002-09-17 Ethicon, Inc. Viscous suspension spinning process for producing resorbable ceramic fibers and scaffolds
WO2001035932A2 (en) 1999-11-18 2001-05-25 The Regents Of The University Of Michigan Sustained drug delivery from structural matrices
AU1979201A (en) 1999-12-09 2001-06-18 Bio Syntech Canada Inc Mineral-polymer hybrid composition
US6479418B2 (en) * 1999-12-16 2002-11-12 Isotis N.V. Porous ceramic body
US20030103960A1 (en) 1999-12-22 2003-06-05 Pierre Philippart Sealant and bone generating product
JP2003518411A (ja) * 1999-12-29 2003-06-10 リジェネレーション テクノロジーズ インク. ペースト再構成のためのシステムおよびその使用法
CA2398517C (en) * 2000-01-28 2009-08-11 Dot Dunnschicht-Und Oberflachen-Technologie Gmbh Inorganic resorbable bone substitute material and production method
AU2000251259A1 (en) 2000-02-04 2001-08-14 Zymogenetics Inc. Methods for promoting growth of bone, ligament, and cartilage using zvegf4
CA2399224A1 (en) 2000-02-18 2001-08-23 Regeneration Technologies, Inc. Implantable tissues infused with growth factors and other additives
IT1316769B1 (it) * 2000-02-18 2003-05-12 Getters Spa Pannello evacuato per isolamento termico con ridotta conduzione dicalore ai bordi
US7022506B2 (en) * 2000-02-23 2006-04-04 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Method and device for treating osteoarthritis, cartilage disease, defects and injuries in the human knee
US20030055511A1 (en) 2000-03-03 2003-03-20 Schryver Jeffrey E. Shaped particle comprised of bone material and method of making the particle
WO2001066044A2 (en) 2000-03-03 2001-09-13 Smith & Nephew, Inc. Shaped particle and composition for bone deficiency and method of making the particle
WO2001066130A1 (en) 2000-03-09 2001-09-13 Sulzer Biologics Inc. Product and method for biological anchoring of connective tissue to bone
US20030125252A1 (en) * 2000-03-14 2003-07-03 Underhill T. Michael Compositions and methods for affecting osteogenesis
US20020006437A1 (en) 2000-05-01 2002-01-17 Grooms Jamie M. Non-migration tissue capsule
US20020022885A1 (en) 2000-05-19 2002-02-21 Takahiro Ochi Biomaterial
WO2001088867A2 (en) * 2000-05-19 2001-11-22 Europrint Holdings Limited Method and system for implementing a game
US7081240B1 (en) 2000-06-28 2006-07-25 Zimmer Orthobiologics, Inc. Protein mixtures for wound healing
US20020082220A1 (en) 2000-06-29 2002-06-27 Hoemann Caroline D. Composition and method for the repair and regeneration of cartilage and other tissues
SE517168C2 (sv) * 2000-07-17 2002-04-23 Bone Support Ab En komposition för ett injicerbart ersättningsmaterial för benmineral
DK177997B1 (da) * 2000-07-19 2015-02-23 Ed Geistlich Söhne Ag Für Chemische Ind Knoglemateriale og collagenkombination til opheling af beskadigede led
GB0020610D0 (en) 2000-08-21 2000-10-11 Dytech Corp Ltd Uses of porous carriers
US6739112B1 (en) 2000-08-21 2004-05-25 Nu Vasive, Inc. Bone allograft packaging system
US6773723B1 (en) 2000-08-30 2004-08-10 Depuy Acromed, Inc. Collagen/polysaccharide bilayer matrix
WO2002036147A1 (en) 2000-10-31 2002-05-10 Orquest, Inc. Mineralized collagen-polysaccharide matrix for bone and cartilage repair
CA2365376C (en) 2000-12-21 2006-03-28 Ethicon, Inc. Use of reinforced foam implants with enhanced integrity for soft tissue repair and regeneration
US20020127265A1 (en) 2000-12-21 2002-09-12 Bowman Steven M. Use of reinforced foam implants with enhanced integrity for soft tissue repair and regeneration
US7192604B2 (en) * 2000-12-22 2007-03-20 Ethicon, Inc. Implantable biodegradable devices for musculoskeletal repair or regeneration
WO2002058755A2 (en) 2001-01-25 2002-08-01 Regeneration Technologies, Inc. Injectable porous bone graft materials
US7005135B2 (en) * 2001-01-30 2006-02-28 Ethicon Inc. Glass scaffolds with controlled resorption rates and methods for making same
US20020169122A1 (en) 2001-02-23 2002-11-14 Wyeth Chondrogenic potential of human bone marrow-derived CD105+ cells by BMP
US6575986B2 (en) 2001-02-26 2003-06-10 Ethicon, Inc. Scaffold fixation device for use in articular cartilage repair
US6743232B2 (en) * 2001-02-26 2004-06-01 David W. Overaker Tissue scaffold anchor for cartilage repair
US20030049328A1 (en) * 2001-03-02 2003-03-13 Dalal Paresh S. Porous beta-tricalcium phosphate granules and methods for producing same
US6949251B2 (en) 2001-03-02 2005-09-27 Stryker Corporation Porous β-tricalcium phosphate granules for regeneration of bone tissue
US20040171630A1 (en) 2001-06-19 2004-09-02 Yuntae Kim Tyrosine kinase inhibitors
JP2003010310A (ja) * 2001-06-27 2003-01-14 Olympus Optical Co Ltd 頭蓋骨用骨補填材料および補填方法
WO2003006025A1 (en) 2001-07-09 2003-01-23 Mayo Foundation For Medical Education And Research Methods and materials for treating bone conditions
US7020382B2 (en) * 2001-07-12 2006-03-28 Thomson Licensing Modifying video by inserting shadow intra pictures
ATE359836T1 (de) 2001-09-24 2007-05-15 Millenium Biologix Inc Poröse keramische komposit-knochenimplantate
WO2003033677A2 (en) 2001-10-19 2003-04-24 Zymogenetics, Inc. Dimerized growth factor and materials and methods for producing it
US6649072B2 (en) 2001-11-16 2003-11-18 Robert Brandt Method for producing autologous platelet-rich plasma
WO2003043576A2 (en) 2001-11-20 2003-05-30 Depuy Products, Inc. Flowable osteogenic and chondrogenic compositions
AU2002361860A1 (en) * 2001-12-21 2003-07-15 Richard J. Lagow Calcium phosphate bone replacement materials and methods of use thereof
EP1499267A4 (en) 2002-02-05 2008-10-29 Depuy Mitek Inc BIOREGRADABLE OSTEOCONDUCTIVE COMPOSITIONS FOR BONE REGENERATION
EP1483298A4 (en) 2002-02-11 2007-03-14 Zymogenetics Inc MATERIALS AND METHODS FOR PREPARING DIMERED GROWTH FACTORS
WO2003070186A2 (en) 2002-02-20 2003-08-28 The Cleveland Clinic Foundation Composition and method for inducing bone growth and healing
DK175356B1 (da) 2002-02-28 2004-09-06 Coloplast As Stomiindretning
JP3739715B2 (ja) * 2002-03-19 2006-01-25 オリンパス株式会社 人工骨および組織工学用担体
KR100460685B1 (ko) 2002-04-10 2004-12-09 재단법인서울대학교산학협력재단 인산칼슘계 화합물을 이용한 인공 골 충진재 및 그 제조방법
US7514248B2 (en) 2002-04-18 2009-04-07 University Of Florida Research Foundation, Inc. Process for making organic/inorganic composites
EP1539185A4 (en) 2002-05-02 2006-04-05 Osteoscreen Inc METHODS AND COMPOSITIONS FOR STIMULATING BONE GROWTH USING NITRIC OXIDE FREEZING BISPHOSPHONATE CONJUGATES
WO2003094617A2 (en) * 2002-05-06 2003-11-20 Genentech, Inc. Use of vegf for treating bone defects
US7368125B2 (en) * 2002-06-05 2008-05-06 Ethicon, Inc. Amphiphilic polymers for medical applications
US7166133B2 (en) 2002-06-13 2007-01-23 Kensey Nash Corporation Devices and methods for treating defects in the tissue of a living being
US7041309B2 (en) 2002-06-13 2006-05-09 Neuropro Technologies, Inc. Spinal fusion using an HMG-CoA reductase inhibitor
CA2432583A1 (en) 2002-06-20 2003-12-20 Merck Patent Gesellschaft Mit Beschraenkter Haftung Method of preparing alpha- and beta-tricalcium phosphate powders
US20040002770A1 (en) * 2002-06-28 2004-01-01 King Richard S. Polymer-bioceramic composite for orthopaedic applications and method of manufacture thereof
ATE295744T1 (de) * 2002-07-11 2005-06-15 Biomet Deutschland Gmbh Verfahren zur herstellung poröser calciumphosphatstückchen und -granulaten aus der gelatineverarbeitung
US7744651B2 (en) * 2002-09-18 2010-06-29 Warsaw Orthopedic, Inc Compositions and methods for treating intervertebral discs with collagen-based materials
CN1403165A (zh) * 2002-09-26 2003-03-19 东南大学 用于硬组织修复的活性组合物及其制备方法
ES2393321T3 (es) 2002-10-10 2012-12-20 Ono Pharmaceutical Co., Ltd. Promotores de la producción de factores de reparación endógenos
US20040078090A1 (en) 2002-10-18 2004-04-22 Francois Binette Biocompatible scaffolds with tissue fragments
US7824701B2 (en) 2002-10-18 2010-11-02 Ethicon, Inc. Biocompatible scaffold for ligament or tendon repair
JP2004159971A (ja) * 2002-11-14 2004-06-10 Hideki Yoshikawa 骨形成用部材およびその製造方法
EP1592463B1 (en) 2003-02-13 2006-08-16 SYNTHES AG Chur Injectable bone-replacement mixture
JP2006517842A (ja) 2003-02-14 2006-08-03 デピュイ スパイン、インコーポレイテッド 原位置形成型椎骨間融合の装置および方法
US20040243133A1 (en) 2003-03-05 2004-12-02 Therics, Inc. Method and system for manufacturing biomedical articles, such as using biomedically compatible infiltrant metal alloys in porous matrices
US20040193270A1 (en) 2003-03-31 2004-09-30 Depuyacromed, Inc. Implantable bone graft
US7901457B2 (en) 2003-05-16 2011-03-08 Musculoskeletal Transplant Foundation Cartilage allograft plug
US7465446B2 (en) * 2003-05-30 2008-12-16 Medarex, Inc. Surrogate therapeutic endpoint for anti-CTLA4-based immunotherapy of disease
CA2528086C (en) 2003-06-11 2013-01-08 Osteotech, Inc. Osteoimplants and methods for their manufacture
US6974862B2 (en) 2003-06-20 2005-12-13 Kensey Nash Corporation High density fibrous polymers suitable for implant
DE60321328D1 (de) 2003-06-24 2008-07-10 Robert Mathys Foundation Dr H Prothesenvorrichtung zur Wiederherstellung von Knorpel
DE10328892A1 (de) 2003-06-26 2005-05-12 Curasan Ag Knochenaufbaumittel und Herstellungsverfahren
PL1641914T3 (pl) 2003-06-27 2017-01-31 DePuy Synthes Products, Inc. Komórki pochodzące z poporodowej tkanki łożyska oraz sposoby uzyskiwania i zastosowania tych komórek
FI20031120A0 (fi) 2003-07-31 2003-07-31 Bci Bioabsorbable Concepts Ltd Monifunktionaalinen implanttilaite
CN1240637C (zh) * 2003-08-12 2006-02-08 四川大学 多孔磷酸钙生物陶瓷材料及其制备方法
US7163920B2 (en) 2003-09-30 2007-01-16 Ethicon, Inc. Peptide with osteogenic activity
CN1893986A (zh) 2003-10-15 2007-01-10 独立行政法人科学技术振兴机构 利用转录因子用于骨/软骨再生的植入物
CU23352A1 (es) * 2003-10-16 2009-03-16 Centro Nacional De Investigaciones Cientificas Biomateriales compuestos para implantes óseos
NZ581804A (en) 2003-10-22 2011-10-28 Encelle Inc Bioactive hydrogel compositions for regenerating connective tissue
US20050098915A1 (en) 2003-11-07 2005-05-12 Smith & Nephew Inc. Manufacture of bone graft substitutes
AU2004289287A1 (en) 2003-11-10 2005-05-26 Angiotech International Ag Medical implants and fibrosis-inducing agents
MXPA06005358A (es) * 2003-11-14 2006-07-10 Univ Pennsylvania Metodo y aparato para el tratamiento de la osteoartritis, enfermedades de los cartilagos, defectos y lesiones en la cadena humana.
DE10355559A1 (de) 2003-11-21 2005-06-23 Orthogen Ag Transskin
EP1537839A1 (en) 2003-12-02 2005-06-08 Dr. h. c. Robert Mathys Foundation Prosthetic device for cartilage repair
EP1708651A4 (en) 2004-01-27 2011-11-02 Osteotech Inc STABILIZED BONE PROOF
US7189263B2 (en) 2004-02-03 2007-03-13 Vita Special Purpose Corporation Biocompatible bone graft material
US11395865B2 (en) 2004-02-09 2022-07-26 DePuy Synthes Products, Inc. Scaffolds with viable tissue
US7671012B2 (en) 2004-02-10 2010-03-02 Biosurface Engineering Technologies, Inc. Formulations and methods for delivery of growth factor analogs
US7928059B2 (en) 2004-02-24 2011-04-19 Wisconsin Alumni Research Foundation Use of neuropeptides for traumatic cartilage injury
KR101013999B1 (ko) * 2004-03-19 2011-02-14 재단법인서울대학교산학협력재단 표면에 골조직 형성 증진 펩타이드가 고정된 차폐막 및임플란트
US20070190101A1 (en) * 2004-03-31 2007-08-16 Chunlin Yang Flowable bone grafts
US8163030B2 (en) 2004-05-06 2012-04-24 Degradable Solutions Ag Biocompatible bone implant compositions and methods for repairing a bone defect
WO2006031388A2 (en) 2004-08-20 2006-03-23 Hyperbranch Medical Technology, Inc. Dentritic polymers, crosslinked gels, and their uses in orthopedic applications
JP2008513159A (ja) 2004-09-21 2008-05-01 マサチューセッツ・インスティチュート・オブ・テクノロジー 勾配骨組及びその作成方法
US7473678B2 (en) 2004-10-14 2009-01-06 Biomimetic Therapeutics, Inc. Platelet-derived growth factor compositions and methods of use thereof
US7250550B2 (en) 2004-10-22 2007-07-31 Wright Medical Technology, Inc. Synthetic bone substitute material
WO2006050493A2 (en) 2004-11-03 2006-05-11 The Regents Of The University Of Michigan Biodegradable implant for intertransverse process fusion
WO2007008250A2 (en) * 2004-12-07 2007-01-18 Gelwell Biotech Corporation Biomaterials for guided tissue regeneration and target drug delivery
US7621963B2 (en) 2005-04-13 2009-11-24 Ebi, Llc Composite bone graft material
WO2006133403A2 (en) 2005-06-07 2006-12-14 The Regents Of The University Of Colorado Inhibitors of serine protease activity and their use in methods and compositions for treatment of graft rejection and promotion of graft survival
EP1951327A2 (en) 2005-11-17 2008-08-06 Biomimetic Therapeutics, Inc. Maxillofacial bone augmentation using rhpdgf-bb and a biocompatible matrix
US7749555B2 (en) 2006-01-25 2010-07-06 Medtronic, Inc Modification of chemical forces of bone constructs
CA2640601C (en) 2006-01-27 2015-12-29 The Regents Of The University Of California Biomimetic fibrous polymer scaffolds
US20070178159A1 (en) 2006-01-30 2007-08-02 Alza Corporation In-Situ Forming Porous Scaffold
EP2311505B1 (en) 2006-02-09 2013-11-06 BioMimetic Therapeutics, LLC Compositions and methods for treating bone
US7833270B2 (en) 2006-05-05 2010-11-16 Warsaw Orthopedic, Inc Implant depots to deliver growth factors to treat osteoporotic bone
US8460860B2 (en) 2006-05-08 2013-06-11 Nuvasive, Inc. Cancellous bone treated with collagenase and essentially free of blood cells
US9161967B2 (en) 2006-06-30 2015-10-20 Biomimetic Therapeutics, Llc Compositions and methods for treating the vertebral column
AU2007269712B2 (en) 2006-06-30 2013-02-07 Biomimetic Therapeutics, Llc PDGF-biomatrix compositions and methods for treating rotator cuff injuries
JP5552315B2 (ja) 2006-11-03 2014-07-16 バイオミメティック セラピューティクス, エルエルシー アースロデティック術のための組成物および方法
US20100151025A1 (en) 2007-02-20 2010-06-17 Biomimetic Therapeutics, Inc. Prevention and treatment for osteonecrosis and osteoradionecrosis of the jaw
CN101820895A (zh) 2007-06-04 2010-09-01 生物模拟治疗公司 用于治疗脊柱的组合物和方法
EP2167147B1 (en) 2007-06-15 2017-03-29 Warsaw Orthopedic, Inc. Bone matrix compositions and methods
US7993679B2 (en) 2007-09-25 2011-08-09 Integra Lifesciences Corporation Flowable wound matrix and its preparation and use
CN102014977B (zh) 2008-02-07 2015-09-02 生物模拟治疗有限责任公司 用于牵引成骨术的组合物和方法
NZ591338A (en) 2008-09-09 2013-02-22 Biomimetic Therapeutics Inc Platelet-derived growth factor compositions and methods for the treatment of tendon and ligament injuries
JP2012512728A (ja) 2008-12-19 2012-06-07 バイオミメティック セラピューティクス, インコーポレイテッド 低減したプロテアーゼ活性を有する骨移植片ならびに選択方法および使用法
CA2754501A1 (en) 2009-03-05 2010-09-10 Biomimetic Therapeutics, Inc. Platelet-derived growth factor compositions and methods for the treatment of osteochondral defects

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