WO2012173002A1 - 磁性シリカ粒子を用いた測定方法及び該測定方法用試薬 - Google Patents

磁性シリカ粒子を用いた測定方法及び該測定方法用試薬 Download PDF

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真次郎 松田
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Definitions

  • the present invention relates to a method for measuring a substance to be measured using magnetic silica particles and a reagent used in the method. More specifically, the present invention relates to a measurement method and a reagent used for assisting diagnosis, assisting confirmation of therapeutic effect, confirmation of the degree of purification during protein purification and cell separation, and the like.
  • the protein in the biological sample is bound to the particle surface to which the protein can bind, and other than the target protein in the biological sample.
  • a biological substance for example, a protein in a biological sample
  • the protein in the biological sample is bound to the particle surface to which the protein can bind, and other than the target protein in the biological sample.
  • magnetic particles are used because they can be easily separated and collected by magnetic force.
  • a silica film is formed on the surface of core particles made of iron oxide.
  • Magnetic silica particles are described.
  • these magnetic particles are ferromagnetic in magnetic material, and even if the magnetic field at the time of recovery is removed, the magnetic material itself exhibits a temporary magnetic field due to ferromagnetism, and the particles self-associate and / or have poor cleaning properties and / or There is a problem of adversely affecting the next operation (for example, immune reaction).
  • Patent Document 2 discloses magnetic silica particles using a superparamagnetic magnetic substance as the magnetic substance.
  • the particle size is small, the magnetic particle content is low, and it takes time to collect the particles by magnetic force.
  • the particle size is large, the specific surface area is small, so that the magnetic particles are bonded. There is a problem that the amount of protein or the like is small.
  • JP 2000-256388 A Japanese Patent Laid-Open No. 2000-40608
  • the present invention is excellent in binding property when carrying a substance to be measured, a substance similar to the substance to be measured, or a substance that specifically binds to the substance to be measured.
  • An object of the present invention is to provide a method for measuring a substance to be measured using magnetic silica particles, which is excellent in dispersibility, and can provide excellent sensitivity in immunoassay even in a short washing step, and a reagent for the measurement method.
  • the present invention provides a surface of a silica particle containing 60 to 95% by weight of a superparamagnetic metal oxide having an average particle diameter of 1 to 15 nm on the surface of a measurement target substance, a similar substance to the measurement target substance, or a specific target substance.
  • simple B / F separation is enabled by collecting magnetic silica particles using magnetism.
  • the magnetic silica particles contain superparamagnetic metal oxides, their magnetic properties make them excellent in redispersibility of the particles after magnetic collection, and as a result, the measurement target substance is measured (detected) with high sensitivity in a short time. be able to.
  • the substance to be measured in the present invention is not particularly limited as long as it is usually measured in this field.
  • biological body fluids such as serum, blood, plasma and urine, lymph fluid, blood cells, various cells, etc.
  • Typical examples include proteins, lipid proteins, nucleic acids, immunoglobulins, blood coagulation-related factors, antibodies, enzymes, hormones, cancer markers, heart disease markers, and various drugs contained in these samples.
  • proteins such as albumin, hemoglobin, myoglobin, transferrin, protein A, C-reactive protein (CRP), such as high density lipoprotein (HDL), low density lipoprotein (LDL), ultra low density lipo Lipid proteins such as proteins, such as nucleic acids such as deoxyribonucleic acid (DNA) and ribonucleic acid (RNA), such as alkaline phosphatase, amylase, acid phosphatase, ⁇ -glutamyltransferase ( ⁇ -GTP), lipase, creatine kinase (CK), lactic acid Enzymes such as dehydrogenase (LDH), glutamate oxaloacetate transaminase (GOT), glutamate pyruvate transaminase (GPT), renin, protein kinase (PK), tyrosine kinase, such as IgG, IgM, IgA, I immunoglobulins such
  • CRP C
  • the similar substance (analog) of the measurement target substance in the present invention is a substance that can bind to the measurement target substance possessed by a substance that specifically binds to the measurement target substance (measurement target substance binding substance), in other words, measurement.
  • Any substance that has a binding site with the target substance binding substance of the target substance in other words, any substance that can compete with the target substance when it coexists during the reaction between the target substance and the target substance binding substance. .
  • measuring substance-binding substance examples include, for example, “antigen”-“antibody” reaction, “sugar chain”-“protein” reaction, “sugar chain” — Reaction between “lectin”, reaction between “enzyme” and “inhibitor”, reaction between “protein” and “peptide chain”, reaction between “chromosome or nucleotide chain” and “nucleotide chain”, or “nucleotide chain” and “protein”
  • “antigen”-“antibody” reaction examples include, for example, “antigen”-“antibody” reaction, “sugar chain”-“protein” reaction, “sugar chain” — Reaction between “lectin”, reaction between “enzyme” and “inhibitor”, reaction between “protein” and “peptide chain”, reaction between “chromosome or nucleotide chain” and “nucleotide chain”, or “nucleotide chain” and “protein”
  • the other is this. It is a substance binding substance to be measured.
  • the measurement target substance binding substance is “antibody”, and when the measurement target substance or similar substance is “antibody”, the measurement target substance binding substance is It is an “antigen” (the same applies to the other combinations described above).
  • nucleotide chain oligonucleotide chain, polynucleotide chain
  • chromosome peptide chain (for example, C-peptide, angiotensin I, etc.); protein [for example, procalcitonin, immunoglobulin A (IgA), immunoglobulin E ( IgE), immunoglobulin G (IgG), immunoglobulin M (IgM), immunoglobulin D (IgD), ⁇ 2-microglobulin, albumin, their degradation products, serum proteins such as ferritin]; enzymes [eg amylase (eg pancreatic type) , Salivary gland type, X type, etc.), alkaline phosphatase (eg, hepatic, osseous, placental, small intestine, etc.), acid phosphatase (eg, PAP), ⁇ -glutamyltransferase (eg, renal, pancreatic, hepatic, etc.) ), Lipa
  • Lipids eg, lipoproteins
  • proteases eg, trypsin, plasmin, serine proteases, etc.
  • tumor marker protein antigens eg, PSA, PGI, PGII, etc.
  • sugar chain antigens eg, AFP (eg, L1 to L3, etc.)
  • HCG hCG family
  • transferrin IgG, thyroglobulin, decay-accelerating-factor (DAF), carcinoembryonic antigen (eg CEA, NCA, NCA-2, NFA, etc.), CA19-9, PIVKA-II, CA125 , Prostate specific antigen, cancer
  • Tumor marker sugar chain antigens having special sugar chains produced by cells, ABO sugar chain antigens, etc.]
  • sugar chains eg, hyaluronic acid, ⁇ -glucan, sugar chains possessed by the above sugar chain antigens, etc.
  • Protein eg hyaluronic acid binding protein, ⁇ -
  • a substance that binds to a measurement target substance or a similar substance by an “antigen”-“antibody” reaction or a “sugar chain-protein” reaction is preferable.
  • an antibody to the measurement target substance or a similar substance, an antigen to which the measurement target substance or the similar substance binds, or a protein that binds to the measurement target substance or the similar substance is preferable. More preferably, the antibody is a protein that binds to a target substance or a substance to be measured or a similar substance.
  • the magnetic silica particles in the present invention are obtained by dispersing a superparamagnetic metal oxide having an average particle diameter of 1 to 15 nm in a silica matrix.
  • the average particle diameter of the superparamagnetic metal oxide in the present invention is an average value of particle diameters measured by observing any 200 superparamagnetic metal oxides with a scanning electron microscope.
  • the average particle size of the superparamagnetic metal oxide can be controlled by adjusting the metal ion concentration at the time of preparing the superparamagnetic metal oxide described later. Also, the average particle diameter of the superparamagnetic metal oxide can be set to a desired value by a usual method such as classification.
  • Superparamagnetism refers to a temporary magnetic field that is induced by the individual atomic magnetic moments of a material being aligned in the presence of an external magnetic field, and that when the external magnetic field is removed, partial alignment is impaired and no magnetic field is exhibited.
  • superparamagnetic metal oxides that exhibit superparamagnetism with an average particle size of 1 to 15 nm include oxides such as iron, cobalt, nickel, and alloys thereof. Iron is particularly preferred.
  • a superparamagnetic metal oxide may be used individually by 1 type, or may use 2 or more types together.
  • the average particle size is less than 1 nm, synthesis is difficult, and when the average particle size exceeds 15 nm, the magnetic properties of the obtained magnetic silica particles become ferromagnetic, and even if the magnetic field is removed in actual application, the magnetic substance There is a problem in that the particles themselves exhibit a temporary magnetic field and the particles self-associate, resulting in poor detergency and / or adverse effects on immune reactions and the like.
  • iron oxide various known iron oxides can be used.
  • magnetite, ⁇ -hematite, magnetite- ⁇ -hematite intermediate iron oxide and ⁇ -hematite- ⁇ -hematite intermediate iron oxide are preferred because of their excellent chemical stability, and have a large saturation magnetization.
  • Magnetite is more preferable because of its excellent sensitivity to an external magnetic field.
  • the lower limit of the content of superparamagnetic metal oxide in the magnetic silica particles is usually 60% by weight, preferably 65% by weight, and the upper limit is usually 95% by weight, preferably 80% by weight.
  • the content of the superparamagnetic metal oxide is less than 60% by weight, the obtained magnetic silica particles are not sufficiently magnetized, so it takes time for the separation operation in actual use. Have difficulty.
  • the production method of the superparamagnetic metal oxide is not particularly limited, but based on the one reported by Massart, a coprecipitation method using a water-soluble iron salt and ammonia (R. Massart, IEEE Trans. Magn. 1981, 17, 1247). ) Or a method using an oxidation reaction in an aqueous solution of a water-soluble iron salt.
  • the average particle size of the magnetic silica particles is preferably 1 to 5 ⁇ m, more preferably 1 to 3 ⁇ m. When the average particle size is less than 1 ⁇ m, it tends to take time for separation and recovery. When the average particle size exceeds 5 ⁇ m, the surface area decreases, and the supported substance (target substance, similar substance to the measurement target substance or specific target substance to be measured) The binding amount of the substance that binds automatically) tends to decrease the binding efficiency.
  • the average particle size of the magnetic silica particles in the present invention is an average value of the particle sizes measured by observing any 200 magnetic silica particles with a scanning electron microscope (“JSM-7000F” manufactured by JEOL Ltd.). is there.
  • the average particle size of the magnetic silica particles can be controlled by adjusting the particle size of the oil-in-water emulsion by adjusting the mixing conditions (shearing force, etc.) when preparing the oil-in-water emulsion described later. Further, the average particle diameter can be set to a desired value by a method such as a change in conditions of the water washing step at the time of producing the magnetic silica particles or a normal classification method.
  • Examples of the method for producing magnetic silica particles in the present invention include superparamagnetic metal oxide particles having an average particle diameter of 1 to 15 nm, and 30 to 500% by weight (alkyl) with respect to 100% by weight of the superparamagnetic metal oxide particles.
  • the solution (B) containing the catalyst for hydrolysis of the above is mixed to prepare an oil-in-water emulsion, and the hydrolysis and condensation reaction of the (alkyl) alkoxysilane is carried out, and the superparamagnetic metal oxide is included in the silica.
  • a method for producing the produced particles is produced particles.
  • (alkyl) alkoxysilane After hydrolyzing and condensing the (alkyl) alkoxysilane, magnetic silica particles are obtained by centrifugal separation and solid-liquid separation with a magnet, washing with water or methanol and drying.
  • (alkyl) alkoxysilane means alkylalkoxysilane or alkoxysilane.
  • Examples of the dispersant include an organic compound having one or more carboxyl groups in the molecule, an organic compound having one or more sulfo groups, and an organic compound having one or more carboxyl groups and one or more sulfo groups. Can be mentioned. Specific examples include the organic compounds (a-1) to (a-5) exemplified below, and these may be used alone or in combination of two or more.
  • (A-1) Organic compound having two or more carboxyl groups: C2-C30 aliphatic polycarboxylic acids (oxalic acid, malonic acid, succinic acid, glutaric acid, adipic acid, pimelic acid, suberic acid, azelaic acid, sebacic acid, propane-1,2,3-tricarboxylic acid, Saturated polycarboxylic acids such as citric acid and dodecanedioic acid, and unsaturated polycarboxylic acids such as maleic acid, fumaric acid and itaconic acid), aromatic polycarboxylic acids having 8 to 30 carbon atoms (phthalic acid, isophthalic acid, terephthalic acid) Acid, trimellitic acid and pyromellitic acid) and alicyclic polycarboxylic acids having 5 to 30 carbon atoms (cyclobutene-1,2-dicarboxylic acid, cyclopentene-1,2-dicarboxylic acid, furan-2,3-dicarboxylic acid)
  • A-2) Organic compound having two or more sulfo groups: C1-C30 aliphatic polysulfonic acid (methionic acid, 1,1-ethanedisulfonic acid, 1,2-ethanedisulfonic acid, 1,1-propanedisulfonic acid, 1,3-propanedisulfonic acid, polyvinylsulfonic acid, etc.
  • Aromatic polysulfonic acid having 6 to 30 carbon atoms (m-benzenedisulfonic acid, 1,4-naphthalenesulfonic acid, 1,5-naphthalenedisulfonic acid, 1,6-naphthalenedisulfonic acid, 2,6-naphthalenedisulfonic acid 2,7-naphthalenedisulfonic acid and sulfonated polystyrene, etc.), bis (fluorosulfonyl) imide and bis (perfluoroalkanesulfonyl) imide having 2 to 10 carbon atoms [bis (trifluoromethanesulfonyl) imide, bis (pentafluoroethane) Sulfonyl) imide, bis (nonafluorobutanesulfonate) ) Imide, pentafluoroethanesulfonyl trifluoromethanesulfonyl imide, trifluoromethanesulfonyl h
  • (A-3) Organic compound having at least one carboxyl group and one sulfo group: C2-C30 sulfocarboxylic acids (such as sulfoacetic acid and sulfosuccinic acid) and C7-C30 sulfoaromatic mono- or polycarboxylic acids (o-, m- or p-sulfobenzoic acid, 2,4-disulfo) Benzoic acid, 3-sulfophthalic acid, 3,5-disulfophthalic acid, 4-sulfoisophthalic acid, 2-sulfoterephthalic acid, 2-methyl-4-sulfobenzoic acid, 2-methyl-3,5-disulfobenzoic acid, 4 -Propyl-3-sulfobenzoic acid, 4-isopropyl-3-sulfobenzoic acid, 2,4,6-trimethyl-3-sulfobenzoic acid, 2-methyl-5-sulfoterephthalic acid
  • (A-4) Organic compound having one carboxyl group: C1-C30 aliphatic saturated monocarboxylic acid (formic acid, acetic acid, propionic acid, butyric acid, isobutyric acid, valeric acid, caproic acid, enanthic acid, caprylic acid, verargonic acid, lauric acid, myristic acid, stearic acid, and behenine Acid etc.), C3-30 aliphatic unsaturated monocarboxylic acids (acrylic acid, methacrylic acid, oleic acid, etc.), C3-30 hydroxy aliphatic monocarboxylic acids (glycolic acid, lactic acid, tartaric acid, etc.) Alicyclic monocarboxylic acids having 4 to 30 carbon atoms (cyclopropanecarboxylic acid, cyclopentanecarboxylic acid, cyclohexanecarboxylic acid, etc.), aromatic monocarboxylic acids having 7 to 30 carbon atoms (benzoic acid
  • Ruorokarubon acid trifluoroacetic acid, undecafluoro-hexanoic acid, tridecafluoro heptanoic acid, perfluorooctanoic acid, pentadecafluorooctanoic acid, peptidase data decafluorooctanoate nonanoic acid and nonadecamethylene fluoro decanoic acid, etc.
  • (A-5) Organic compound having one sulfo group: Aliphatic monosulfonic acids having 1 to 30 carbon atoms (methanesulfonic acid, ethanesulfonic acid, propanesulfonic acid, butanesulfonic acid, hexanesulfonic acid, decanesulfonic acid, undecanesulfonic acid, dodecanesulfonic acid, etc.), 6 to carbon atoms 30 aromatic monosulfonic acids (benzenesulfonic acid, p-toluenesulfonic acid, o-toluenesulfonic acid, m-toluenesulfonic acid, 4-dodecylbenzenesulfonic acid, 4-octylbenzenesulfonic acid, naphthalenesulfonic acid, etc.) and Perfluoroalkanesulfonic acid having 1 to 20 carbon atoms (such as trifluoromethanesulfonic
  • organic compounds having 10 to 30 carbon atoms in (a-4) are preferred from the viewpoint of compatibility with (alkyl) alkoxysilane.
  • the amount of the dispersant used is preferably 100 to 2,000% by weight, particularly 250 to 1,000% by weight, based on the weight of the superparamagnetic metal oxide.
  • the dispersant is less than 100% by weight, the superparamagnetic metal oxide tends to be difficult to disperse in the (alkyl) alkoxysilane solution.
  • the dispersant exceeds 2,000% by weight, the emulsion is dispersed in the aqueous solution in the subsequent step. Tends to be difficult to form.
  • Examples of the (alkyl) alkoxysilane used include compounds represented by the following general formula (1).
  • R 1 and R 2 represent a monovalent hydrocarbon group having 1 to 10 carbon atoms which may be substituted with an amino group, a carboxyl group, a hydroxyl group, a mercapto group or a glycidyloxy group.
  • hydrocarbon group having 1 to 10 carbon atoms examples include an aliphatic hydrocarbon group having 1 to 10 carbon atoms (methyl group, ethyl group, n- or iso-propyl group, n- or iso-butyl group, n- or iso group). -Pentyl group, vinyl group and the like), aromatic hydrocarbon groups having 6 to 10 carbon atoms (phenyl group and the like), and aromatic aliphatic groups having 7 to 10 carbon atoms (benzyl group and the like).
  • the compound represented by the general formula (1) include alkoxysilanes such as tetramethoxysilane, tetraethoxysilane, tetraisopropoxysilane and tetrabutoxysilane; alkylalkoxy such as methyltrimethoxysilane and methyltriethoxysilane.
  • Silane amino such as 3-aminopropyltrimethoxysilane, 3-aminopropyltriethoxysilane, N-2 (aminoethyl) 3-aminopropyltrimethoxysilane and N-2 (aminoethyl) 3-aminopropyltriethoxysilane
  • Alkylalkoxysilanes having alkyl groups substituted with groups
  • alkylalkoxysilanes having alkyl groups substituted with carboxyl groups such as 7-carboxy-heptyltriethoxysilane and 5-carboxy-pentyltriethoxysilane
  • Alkylkoxysilanes having alkyl groups substituted with hydroxyl groups such as 3-hydroxypropyltrimethoxysilane and 3-hydroxypropyltriethoxysilane
  • mercapto groups such as 3-mercaptopropyltrimethoxysilane and 3-mercaptopropyltriethoxysi
  • the amount of (alkyl) alkoxysilane used is usually 30 to 500% by weight, preferably 40 to 200% by weight, based on 100% by weight of the superparamagnetic metal oxide.
  • the amount of (alkyl) alkoxysilane is less than 30% by weight, the surface of the superparamagnetic metal oxide becomes difficult to be uniformly coated.
  • the amount exceeds 500% by weight the content of the superparamagnetic metal oxide decreases, and recovery by magnetic force The time will be longer.
  • the amount of water used is preferably 500 to 3,000% by weight, more preferably 800 to 2,000% by weight, based on 100% by weight of the superparamagnetic metal oxide.
  • non-water-soluble organic solvent examples include aromatic hydrocarbon solvents having 6 to 16 carbon atoms (toluene and xylene, etc.) having a solubility in water at 25 ° C. of 0.1 g / 100 g or less and 5 to 16 carbon atoms.
  • Group hydrocarbon solvents n-heptane, n-hexane, cyclohexane, n-octane, decane, decahydronaphthalene, etc.
  • the amount of the water-insoluble organic solvent used is preferably 200 to 1,000% by weight, particularly 250 to 500% by weight, based on 100% by weight of the superparamagnetic metal oxide.
  • the amount of the organic solvent used is less than 200% by weight, the dispersibility of the superparamagnetic metal oxide tends to deteriorate, and when it exceeds 1,000% by weight, the particle diameter of the magnetic silica particles tends to become non-uniform. is there.
  • water-soluble organic solvent examples include alcohols having 1 to 3 carbon atoms (such as methanol, ethanol and n- or iso-propanol) having a solubility in water at 25 ° C. of 100 g / 100 g of water, and those having 2 to 9 carbon atoms.
  • Glycol ethylene glycol and diethylene glycol etc.
  • amide N-methylpyrrolidone etc.
  • ketone acetone etc.
  • cyclic ether tetrahydrofuran and tetrahydropyran etc.
  • lactone ⁇ -butyrolactone etc.
  • sulfoxide dimethyl sulfoxide etc.
  • nitrile nitrile and the like.
  • alcohols having 1 to 4 carbon atoms are preferable from the viewpoint of the uniformity of the particle diameter of the magnetic silica particles.
  • a water-soluble organic solvent may be used individually by 1 type, or may use 2 or more types together.
  • the amount of the water-soluble organic solvent used is preferably 100 to 500% by weight with respect to 100% by weight of water.
  • Nonionic surfactants include higher alcohol alkylene oxide (hereinafter abbreviated as AO) adducts; higher alcohols having 8 to 24 carbon atoms (decyl alcohol, dodecyl alcohol, coconut oil alkyl alcohol, octadecyl alcohol, oleyl alcohol, etc.) 1-20 mol of ethylene oxide (hereinafter abbreviated as EO) and / or 1-20 mol of propylene oxide (hereinafter abbreviated as PO) (including block adducts and / or random adducts, the same shall apply hereinafter), carbon AO adduct of alkylphenol having an alkyl number of 6 to 24; EO 1-20 mol and / or PO 1-20 mol adduct, polypropylene glycol EO adduct and polyethylene glycol PO adduct of octyl or nonylphenol; Pluronic type surfactant, etc.
  • AO alcohol alkylene oxide
  • fatty acid O adducts EO 1-20 mol and / or PO 1-20 mol adducts of fatty acids having 8 to 24 carbon atoms (such as decanoic acid, lauric acid, myristic acid, palmitic acid, stearic acid, oleic acid and coconut oil fatty acid) And polyhydric alcohol type nonionic surfactants; EO and / or PO adducts of 2 to 8 carbon number polyhydric alcohols having 3 to 36 carbon atoms (such as glycerin, trimethylolpropane, pentaerythritol, sorbit and sorbitan); Fatty acid esters of polyhydric alcohols and EO adducts thereof [TWEEN® 20 and TWEEN® 80 etc.]; alkyl glucosides (N-octyl- ⁇ -D-maltoside, n-dodecanoyl sucrose and n- Octyl- ⁇ -D-glucopyranoside
  • the amount of the nonionic surfactant used is preferably 100 to 1,000% by weight, more preferably 300 to 500% by weight, based on 100% by weight of the superparamagnetic metal oxide. When it is less than 100% by weight or more than 1,000% by weight, the emulsion is not stable, and the particle size distribution of the generated particles tends to be wide.
  • the amount of the aqueous solution containing the nonionic surfactant is preferably 1,000 to 10,000% by weight, more preferably 1,500 to 4,000% by weight with respect to 100% by weight of the superparamagnetic metal oxide. When the amount is less than 1,000% by weight or exceeds 10,000% by weight, the emulsion is not stable and the particle size distribution of the generated particles tends to be wide.
  • Lewis acid or hydrochloric acid can be used as a catalyst for hydrolysis of (alkyl) alkoxysilane.
  • inorganic acid such as hydrochloric acid, organic acid such as acetic acid, inorganic basic compound such as ammonia, ethanolamine, etc.
  • An amine compound such as can be used.
  • the use amount of the hydrolysis catalyst is preferably 0.01 to 100% by weight, particularly preferably 0.2 to 50% by weight, based on the weight of the (alkyl) alkoxysilane.
  • the mixing method of the dispersion liquid (A1) or the dispersion liquid (A2) and the solution (B) is not particularly limited, and can be mixed at once using the equipment described later. From the viewpoint of uniformity, a method of dropping the dispersion (A1) or the dispersion (A2) while stirring the solution (B) is preferable.
  • the equipment for mixing the dispersion (A1) or the dispersion (A2) and the solution (B) is not particularly limited as long as it is generally commercially available as an emulsifier or a disperser.
  • a homogenizer Batch type emulsifiers such as IKA), Polytron (made by Kinematica) and TK Auto Homo Mixer (made by Koki Kogyo Co., Ltd.), Ebara Milder (made by Ebara Corporation), TK Fillmix, TK Pipeline Homo Mixer (Manufactured by Special Machine Industries Co., Ltd.), colloid mill (manufactured by Shinko Pantech Co., Ltd.), clear mix (manufactured by Mtechnic Co., Ltd.), slasher, trigonal wet pulverizer (manufactured by Mitsui Miike Chemical Industries Co., Ltd.) ) And fine flow mills (manufactured by Taiheiyo Kiko Co., Ltd.), etc.
  • High pressure emulsifiers such as Iser and APV Gaurin (made by Gaurin), membrane emulsifiers such as membrane emulsifier (made by Chilling Industries), and vibratory emulsifiers such as Vibro mixer (made by Chilling Industries)
  • Ultrasonic emulsifiers such as an ultrasonic homogenizer (manufactured by Branson) are listed. From the viewpoint of uniform particle size, APV Gaurin, homogenizer, TK auto homomixer, Ebara Milder, TK fill mix, TK pipeline homo A mixer and a clear mix are preferred.
  • the temperature for the hydrolysis and condensation reaction of the (alkyl) alkoxysilane is preferably 25 to 100 ° C., more preferably 45 to 60 ° C.
  • the reaction time is preferably 0.5 to 5 hours, more preferably 1 to 2 hours.
  • the superparamagnetic metal oxide is included in silica and does not exist on the surface of the particle, so that it specifically binds to many substances to be measured, similar substances to the substances to be measured, or substances to be measured.
  • the substance can be immobilized on its surface.
  • the magnetic silica particles of the present invention a substance to be measured, a substance similar to the substance to be measured, or a substance that specifically binds to the substance to be measured (hereinafter, these may be collectively referred to as a supporting substance).
  • the immobilization method include a method of physically adsorbing the supporting substance on the above-described magnetic silica particles.
  • At least one organic compound selected from the group consisting of alkylalkoxysilanes having a functional group is preferably bonded to the surface of the magnetic silica particles, and the supporting substance is preferably immobilized on the magnetic silica particles through them.
  • an alkylalkoxysilane having a functional group is more preferable from the viewpoint of binding a specific supporting material.
  • Examples of the functional group possessed by the alkylalkoxysilane include an amino group, a carboxyl group, a hydroxyl group, a mercapto group, and a glycidyloxy group, and one molecule of the alkylalkoxysilane may have different types of functional groups.
  • the above-mentioned amino group, carboxyl group, hydroxyl group, mercapto group or glycidyloxy can be used as the (alkyl) alkoxysilane for producing the magnetic silica particle.
  • magnetic silica particles are dispersed in a solvent so that the concentration thereof is 1 to 50% by weight, and this dispersion is substituted with an amino group, a carboxyl group, a hydroxyl group, a mercapto group, or a glycidyloxy group.
  • a method of performing a hydrolysis reaction and a condensation reaction at room temperature for 1 hour or more by adding an alkylalkoxysilane solution having an alkyl group are performed by adding an alkylalkoxysilane solution having an alkyl group.
  • the solvent in this method is appropriately selected according to the solubility of the alkylalkoxysilane used, and when an alkylalkoxysilane having an alkyl group substituted with an amino group, carboxyl group, hydroxyl group or mercapto group soluble in water is used. Water or a mixed solvent of water-alcohol is preferably used. When an alkylalkoxysilane having an alkyl group substituted with a glycidyloxy group that is difficult to dissolve in water is used, it is preferable to use butyl acetate or the like.
  • the amount of alkylalkoxysilane having an alkyl group substituted with an amino group, carboxyl group, hydroxyl group, mercapto group or glycidyloxy group should be 0.1 to 5% by weight based on the magnetic silica particles before treatment. preferable. If the amount is less than 0.1% by weight, the number of introduced functional groups may not be sufficient. If the amount exceeds 5% by weight, the effect of further increasing the amount of functional groups on the particle surface tends to decrease.
  • a method for binding glutaraldehyde, albumin, carbodiimide, streptavidin, or biotin to the surface of the magnetic silica particles is not particularly limited, and for example, the binding can be performed as follows.
  • Glutaraldehyde having an aldehyde group and biotin having a carboxyl group can be bonded to the surface of the magnetic silica particle by reacting the alkyl alkoxysilane having an amino group with the magnetic silica particle bonded to the surface.
  • albumin and streptavidin having an amino group and carbodiimide having a carbodiimide group can be bonded to the surface of the magnetic silica particle by reacting with the alkyl silica silane having a carboxyl group bonded to the surface. .
  • the measurement target substance measurement method of the present invention is usually performed in this field except that the method is performed using the magnetic silica particles in the present invention.
  • the literature for example, enzyme immunoassay second edition (edited by Eiji Ishikawa et al., Medical School) 1982]] according to the sandwich method, competition method and measurement method described in JP-A-6-130063.
  • a sample containing a measurement target substance, a magnetic silica particle on which a substance that specifically binds to the measurement target substance (measurement target substance binding substance) is immobilized, and a measurement target labeled with a labeling substance are used.
  • a substance binding substance (labeled substance binding substance) is brought into contact with each other to form a complex (labeled complex) of the substance to be measured, the substance to be measured, and the labeling substance binding substance on the magnetic silica particle.
  • the magnetic silica particles carrying the labeled complex are subjected to B / F separation, the amount of the labeled substance in the labeled complex is measured, and the measurement target substance in the sample is measured based on the result.
  • a sample containing a measurement target substance and a magnetic silica particle having a measurement target substance binding substance immobilized on the surface are brought into contact with each other, and a composite of the measurement target substance binding substance and the measurement target substance is formed on the surface of the magnetic silica particle.
  • a complex of a measurement target substance binding substance, a measurement target substance, and a label measurement target substance binding substance supported on the magnetic silica particles (in addition, a complex of the measurement target substance binding substance supported on the magnetic silica particles) Labeling complex) is formed, magnetic silica particles carrying the labeling complex are subjected to B / F separation, the amount of labeling substance in the labeling complex is measured, and the substance to be measured in the sample is determined based on the result.
  • the measurement target substance and the magnetic silica particles on which the measurement target substance binding substance is immobilized are reacted, and then the labeled measurement target substance binding substance is reacted. These may be reacted with the magnetic silica particles on which the substance binding substance to be measured is immobilized after reacting with the substance to be measured.
  • the B / F separation in the sandwich method means separation of the labeled complex from the labeled substance binding substance that was not involved in the formation of the labeled complex. Specifically, it is supported on magnetic silica particles. Measured substance binding substance, a complex of the measurement target substance binding substance supported on the magnetic silica particles and the measurement target substance, and the above labeled complex, and other components (other than the measurement target substance in the sample) This means separation from components, labeled measurement substance binding substances, etc. that did not participate in the formation of the labeled complex.
  • the B / F separation step is an essential step after the formation of the labeled complex, but it should also be performed after the complex of the substance to be measured and the substance to be measured is formed on the surface of the magnetic silica particles. Can do.
  • a magnetic silica particle having a similar substance immobilized on its surface is contacted to form a complex (labeled complex) of the measurement target substance or a similar substance and a labeled measurement target substance binding substance on the magnetic silica particle.
  • the magnetic silica particles carrying the labeled complex are subjected to B / F separation, the amount of the labeled substance in the labeled complex is measured, and the measurement target substance in the sample is measured based on the result.
  • a sample containing a measurement target substance, a labeled measurement target substance binding substance, and a magnetic silica particle carrying the measurement target substance or a similar substance are brought into contact with each other, and the labeled measurement target substance binding substance is brought into contact with the sample.
  • a complex of a measurement target substance or its similar substance and a labeled measurement target substance binding substance on a magnetic silica particle by causing a competitive reaction with the measurement target substance on the magnetic silica particle or a similar substance thereof (labeled complex)
  • the magnetic silica particles carrying the labeled complex are subjected to B / F separation, the amount of the labeled substance in the labeled complex is measured, and the measurement target substance in the sample is measured based on the result.
  • the measurement target substance, the labeled measurement target substance binding substance, and the magnetic silica particles carrying the measurement target substance or a similar substance are simultaneously competitively reacted. Even if a labeled measurement target substance binding substance is added and contacted with a magnetic silica particle supporting a similar substance, the measurement target substance or the labeled measurement target substance binding substance is brought into contact with each other. Magnetic silica particles supporting the similar substance may be added to cause a competitive reaction.
  • the B / F separation in the competition method refers to the labeled complex and other components that did not participate in the formation of the labeled complex (labeled measurement target substance binding substance and labeled measurement target substance binding substance and measurement target substance).
  • magnetic silica particles carrying a measurement target substance or a similar substance and magnetic silica particles carrying a measurement target substance or a similar substance and a labeled measurement target substance This means separation of the complex with the binding substance (labeled complex) and other components (components other than the measurement target substance in the sample, labeled measurement target substance binding substance, complex of the measurement target substance, etc.).
  • a sample containing a measurement target substance, a measurement target substance labeled with a labeling substance or a similar substance (labeled measurement target substance or a similar substance), and a measurement target substance binding substance The supported magnetic silica particles are brought into contact to form a complex (label complex) of the substance to be measured and the labeled substance to be measured or a similar substance on the magnetic silica particles, and the label complex is supported.
  • the magnetic silica particles are subjected to B / F separation, the amount of the labeling substance in the labeling complex is measured, and the substance to be measured in the sample is measured based on the result.
  • a sample containing a measurement target substance, a labeled measurement target substance or a similar substance, and a magnetic silica particle carrying a measurement target substance binding substance are brought into contact with each other, thereby measuring the measurement target substance on the magnetic silica particle.
  • the binding substance is subjected to a competitive reaction between the measurement target substance in the sample and the labeled measurement target substance or a similar substance, and a complex of the measurement target substance binding substance and the labeled measurement target substance or a similar substance on the magnetic silica particles ( Labeling complex), magnetic silica particles carrying the labeling complex are subjected to B / F separation, the amount of labeling substance in the labeling complex is measured, and the substance to be measured in the sample based on the result Can be measured.
  • a measurement target substance, a label measurement target substance or a similar substance, and a magnetic silica particle carrying a measurement target substance binding substance are simultaneously subjected to a competitive reaction.
  • the labeled measurement target substance or its similar substance and the measurement target substance-binding substance are supported even if a labeled measurement target substance or a similar substance is added to cause a competitive reaction.
  • a measurement target substance may be added to cause a competitive reaction.
  • B / F separation in the competition method means separation of the labeled complex from other components (labeled substance to be measured or a similar substance) that did not participate in the formation of the labeled complex.
  • a magnetic silica particle carrying a measurement target substance binding substance a composite of a magnetic silica particle carrying a measurement target substance binding substance and a measurement target substance, and a magnetic silica particle carrying a measurement target substance binding substance
  • other components means separation.
  • the measurement target substance is an enzyme
  • a method using an enzyme activity method other than the sandwich method and the competition method for example, a sample containing the measurement target substance and a measurement target substance binding substance (for example, an enzyme such as an antibody)
  • a magnetic silica particle carrying a substance capable of binding is brought into contact with the magnetic silica particle immobilized on the surface to form a complex of the enzyme and the substance to be measured bound on the magnetic silica particle.
  • B / F separation of the supported magnetic silica particles a substrate according to the type of enzyme, or a substrate and color former according to the type of enzyme, and if necessary, a conjugated enzyme is further added, and the change of the substrate or color former It may be measured by a method of measuring the amount of enzyme in the sample based on the color development result.
  • a substrate, a coloring agent, and a conjugate enzyme for example, when a enzyme is a peroxidase, what is necessary is just to use hydrogen peroxide, a luminol luminescent reagent, etc.
  • the amount of these used may be within the range usually used in this field.
  • B / F separation in the above method means separation of a complex of a measurement target substance and magnetic silica particles carrying a measurement target substance binding substance and other components (components other than the measurement target substance in the sample). Means.
  • the method for measuring a substance to be measured as a method for contacting a sample, magnetic silica particles, a labeled substance to be measured, a labeled substance to be measured, or a similar substance, etc., a usual process such as stirring and mixing is performed.
  • the magnetic silica particles may be dispersed.
  • the reaction time may be appropriately set according to the difference between the measurement target substance, the measurement target substance binding substance used, the sandwich method, the competitive method, etc., but is usually 1 to 10 minutes, preferably 1 to 5 minutes.
  • B / F separation in the method for measuring a substance to be measured of the present invention uses, for example, magnetism of magnetic silica particles, collects magnetic silica particles with a magnet or the like from the outside of the reaction tank, discharges the reaction liquid, and uses the cleaning liquid. After the addition, the magnet is removed and the magnetic silica particles are mixed and dispersed and washed. The above operation may be repeated 1 to 3 times.
  • the cleaning liquid is not particularly limited as long as it is usually used in this field.
  • labeling substances used for labeling a substance to be measured binding substance, a substance to be measured, or a similar substance include alkaline phosphatase, ⁇ -galactosidase, peroxidase, and microperoxidase used in enzyme immunoassay (EIA).
  • Enzymes such as glucose oxidase, glucose-6-phosphate dehydrogenase, malate dehydrogenase, luciferase, tyrosinase, acid phosphatase, such as 99m Tc, 131 I, used in radioimmunoassay (RIA), Radioactive isotopes such as 125 I, 14 C, 3 H, 32 P, such as fluorescein, dansyl, fluorescamine, coumarin, naphthylamine or derivatives thereof used in fluorescence immunoassay (FIA), green fluorescent protein ( Fluorescent substances such as GFP)
  • a luminescent substance such as luciferin, isoluminol, luminol, bis (2,4,6-trifluorophenyl) oxalate, such as a substance having absorption in the ultraviolet region such as phenol, naphthol, anthracene, or derivatives thereof, such as 4- Amino-2,2,6,6-tetramethyl
  • the amount of labeling substance used varies depending on the type of labeling substance to be used, so it cannot be said unconditionally.
  • the substance to be measured and the labeling substance are usually combined with, for example, 1: 1.
  • It may be used by being contained in a buffer solution usually used in this field such as a liquid or a Good buffer solution.
  • a buffer solution usually used in this field such as a liquid or a Good buffer solution.
  • the buffer include those commonly used in this field, such as Tris buffer, phosphate buffer, veronal buffer, borate buffer, Good buffer, and the like.
  • a stabilizer such as albumin, globulin, water-soluble gelatin, polyethylene glycol, surfactant, saccharide, etc. You may keep it.
  • Examples of methods for measuring the labeling substance or its activity include radioimmunoassay (RIA), enzyme immunoassay (EIA), fluorescence immunoassay (FIA), and chemiluminescence immunoassay (CLIA and CLEIA). From the viewpoint of sensitivity in immunoassay over time, EIA, CLIA and CLEIA are preferable, and CLEIA is more preferable.
  • RIA radioimmunoassay
  • EIA enzyme immunoassay
  • FIA fluorescence immunoassay
  • CLIA and CLEIA chemiluminescence immunoassay
  • the measurement method of the present invention may be performed as follows, for example, when measuring AFP by the sandwich method.
  • This washing operation was performed by adding a horseradish-derived peroxidase (hereinafter abbreviated as POD) -labeled anti-AFP antibody (hereinafter abbreviated as a labeled reagent) while leaving the reagent containing the sample or magnetic silica particles. In this case, this washing operation may be omitted. Thereafter, for example, a labeling reagent is added, the reaction solution is stirred, and the magnetic silica particles are dispersed to react and bind the POD-labeled anti-AFP antibody and the complex.
  • POD horseradish-derived peroxidase
  • a labeled reagent a labeled anti-AFP antibody
  • washing is performed by adding and dispersing a washing solution such as physiological saline in the same manner as the washing described above.
  • a washing solution such as physiological saline
  • luminol and hydrogen peroxide are added, and the amount of accumulated chemiluminescence for 1 second is measured with a chemiluminescence meter, and the amount of AFP in the sample is calculated based on the measured value.
  • a calibration curve or the like showing the relationship between the amount of AFP and the accumulated amount of chemiluminescence for 1 second can be easily used in the sample by using a predetermined AFP-containing solution as a sample in advance. The amount of AFP can be calculated.
  • the reagent of the present invention comprises the magnetic silica particles in the present invention and is used in the measurement method.
  • a buffer solution containing magnetic silica particles in the present invention can be mentioned, and as the buffer solution, a buffer solution usually used for immunoassay or the like is preferably used.
  • 1,4-piperazine diethane is used. Examples include sulfonic acid / sodium hydroxide buffer, MOPS [3- (N-morpholino) propanesulfonic acid] / sodium hydroxide buffer, triethanolamine / hydrochloric acid buffer, and PBS (phosphate buffer).
  • the concentration of the buffer in these buffers is preferably 1 to 500 mM, more preferably 5 to 300 mM, and particularly preferably 10 to 200 mM. Above and below, mM represents the concentration (mmol / liter) at 25 ° C.
  • the amount of the magnetic silica particles is not particularly limited, and can be appropriately selected according to the type of the measurement target substance binding substance or the similar substance to the measurement target substance used, the type of the measurement target substance, and the like.
  • the reagent of the present invention is preferably in a form in which the magnetic silica particles of the present invention are dispersed in a buffer solution.
  • the reagent of the present invention is a substance that specifically binds to a measurement target substance labeled with a labeling substance, or a measurement target substance labeled with a labeling substance or its A reagent containing a similar substance (hereinafter sometimes abbreviated as a labeling reagent) may be included.
  • a labeling reagent a substance that specifically binds to a measurement target substance labeled with a labeling substance, or a measurement target substance labeled with a labeling substance or its A reagent containing a similar substance (hereinafter sometimes abbreviated as a labeling reagent) may be included.
  • the labeling substance are the same as those described in the section of the measurement method of the present invention, and preferable ones are also the same.
  • the labeling reagent can contain a buffer solution or the like in addition to a substance that specifically binds to a measurement target substance labeled with a labeling substance, or a measurement target substance or a similar substance labeled with a labeling substance.
  • a buffer usually used for immunoassay is preferable, and examples thereof include the same buffers as those used for the reagent containing the magnetic silica particles described above.
  • the concentration of the buffering agent is the same as that used in the reagent containing the magnetic silica particles described above.
  • the reagent of the present invention may contain a chemiluminescent reagent in addition to the reagent containing the magnetic silica particles and the labeling reagent in the present invention, and the chemiluminescent reagent is selected based on the labeling substance, for example, In the case where the labeling substance is POD, a chemiluminescent reagent first liquid comprising 2,3-dihydro-1,4-phthalazinedione compound and a chemiluminescence enhancer as essential constituents, an oxidizing agent and water as essential constituents And a second chemiluminescent reagent solution.
  • Examples of 2,3-dihydro-1,4-phthalazinedione compounds include the known 2,4-dihydro-1,4-phthalazinedione compounds described in JP-A-2-291299, JP-A-10-319015, JP-A-2000-279196, and the like. 3-Dihydro-1,4-phthalazinedione compounds and mixtures thereof can be used.
  • luminol, isoluminol, N-aminohexyl-N-ethylisoluminol (AHEI), N-aminobutyl-N-ethylisoluminol (ABEI) and metal salts thereof (alkali metal salts, etc.) are preferred. Further preferred is luminol and its metal salt, particularly preferred is the sodium salt of luminol.
  • the content of the 2,3-dihydro-1,4-phthalazinedione compound in the chemiluminescent reagent is appropriately set depending on the type, the applied measurement method, measurement conditions, etc., but the chemiluminescence enhancing effect, storage stability, etc. From this viewpoint, 0.5 to 80 mM is preferable, more preferably 1.8 to 40 mM, and particularly preferably 3.5 to 21 mM.
  • chemiluminescence enhancer examples include known chemiluminescence enhancers described in JP-A-59-500262, JP-A-59-171839 and JP-A-2-291299, and mixtures thereof. Can be used. Of these, from the viewpoint of the chemiluminescence enhancing effect, etc., phenol is preferable, P-iodophenol, 4- (cyanomethylthio) phenol and 4-cyanomethylthio-2-chlorophenol are particularly preferable, and 4- (Cyanomethylthio) phenol.
  • the content of the chemiluminescent enhancer in the chemiluminescent reagent is appropriately set depending on the type, the applied measurement method, measurement conditions, and the like, but from the viewpoint of the chemiluminescent enhancing effect and storage stability, it is 0.1 to 15 mM. Preferably, it is 0.3 to 7.0 mM, particularly preferably 0.6 to 3.4 mM.
  • the first solution of the chemiluminescence reagent can contain a buffer and / or a chelating agent.
  • buffer solution for example, known buffer solutions described in JP-A-10-31915 and JP-A-2003-279489 can be used.
  • Product / sodium hydroxide buffer more preferably 3- [4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazinyl] propanesulfonic acid / sodium hydroxide buffer and 2-hydroxy-3- [4- ( 2-hydroxyethyl) -1-piperazinyl] propanesulfonic acid monohydrate / sodium hydroxide buffer, particularly preferred is 3- [4- (2- Dorokish
  • chelating agent for example, known chelating agents described in JP-A-9-75099 and JP-A-2003-279489 can be used. Of these, 4-coordinate chelating agents are preferred from the viewpoint of chemiluminescence enhancing effect and storage stability, and more preferred are ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) and salts thereof (ethylenediaminetetraacetic acid disodium, ethylenediaminetetraacetic acid trisodium.
  • EDTA ethylenediaminetetraacetic acid
  • salts thereof ethylenediaminetetraacetic acid disodium, ethylenediaminetetraacetic acid trisodium.
  • CyDTA trans-1,2 diaminocyclohexane-N, N, N ′, N′-tetraacetic acid
  • EDTA ethylenediamine Tetraacetic acid
  • the content thereof is 0.001 to 4% by weight based on the weight of the 2,3-dihydro-1,4-phthalazinedione compound from the viewpoint of chemiluminescence enhancing effect and storage stability. It is preferably 0.01 to 2% by weight, particularly preferably 0.05 to 1% by weight.
  • the first chemiluminescent reagent liquid is preferably a liquid, and is preferably alkaline from the viewpoint of the fluorescence intensity of the enzyme.
  • the pH of the first liquid is preferably 7 to 11, more preferably 8 to 10.
  • the pH is measured according to JIS K0400-12-10: 2000 (measurement temperature 25 ° C.).
  • the first chemiluminescent reagent liquid can be easily obtained by uniformly mixing a 2,3-dihydro-1,4-phthalazinedione compound, a chemiluminescence enhancer, and, if necessary, a buffer and / or a chelating agent.
  • Examples of the oxidizing agent contained in the second liquid of the chemiluminescent reagent include known oxidizing agents described in, for example, JP-A-8-261944 and JP-A-2000-279196, etc. [Inorganic peroxide (hydrogen peroxide) , Sodium perborate, potassium perborate, etc.), organic peroxides (dialkyl peroxide, acyl peroxide, etc.), peroxo acid compounds (peroxosulfuric acid, peroxophosphoric acid, etc.), etc.].
  • a hydrogen peroxide aqueous solution a sodium perborate aqueous solution and a potassium perborate aqueous solution are preferable, and a hydrogen peroxide aqueous solution is more preferable.
  • the concentration of the oxidant in the second liquid of the chemiluminescent reagent is appropriately set depending on the type, applied measurement method, measurement conditions, etc., but is preferably 0.5 to 40 mM, more preferably from the viewpoint of the chemiluminescence enhancing effect and the like. Is from 1 to 20 mM, particularly preferably from 2.5 to 10 mM.
  • Examples of the water contained in the second liquid of the chemiluminescent reagent include distilled water, reverse osmosis water, and deionized water. Of these, distilled water and deionized water are preferable from the viewpoint of chemiluminescence enhancing effect and storage stability, and more preferable is deionized water.
  • the chemiluminescent reagent second liquid can contain a chelating agent in addition to the oxidizing agent and water.
  • a chelating agent the thing similar to what was illustrated as a chelating agent which can be contained in the above-mentioned 1st liquid is mentioned, A preferable thing is also the same.
  • the content thereof is preferably 0.2 to 100% by weight, more preferably 0.5 to 20%, based on the weight of the oxidizing agent, from the viewpoints of chemiluminescence enhancing effect and storage stability. % By weight, particularly preferably 1 to 10% by weight.
  • the second chemiluminescent reagent liquid can be easily obtained by uniformly mixing an oxidizing agent, water and, if necessary, a chelating agent.
  • dispersion (A2-1) The obtained magnetite particles adsorbed with oleic acid were charged into a container, and 5.7 parts of decane and 2.2 parts of tetraethoxysilane were added and mixed to prepare dispersion (A2-1).
  • a reaction vessel 39.0 parts of a 25% aqueous ammonia solution, 55.4 parts of isopropanol, 2.9 parts of sorbitan monooleate (“Ionet S-80” manufactured by Sanyo Chemical Industries, Ltd.) and polyoxyethylene (added mole number 20 moles)
  • Production Example 2 Magnetic silica particles (S2) were obtained in the same manner as in Production Example 1 except that the rotation speed of the clear mix during emulsification was changed from 6,000 rpm to 7,500 rpm.
  • Production Example 3 Magnetic silica particles (S3) were obtained in the same manner as in Production Example 1 except that the amount of tetraethoxysilane charged was changed from 2.2 parts to 0.5 parts.
  • Production Example 4 Magnetic silica particles (S4) were obtained in the same manner as in Production Example 3 except that the rotation speed of the clear mix during emulsification was changed from 6,000 rpm to 7,500 rpm.
  • Production Example 5 Magnetic silica particles (S5) were obtained in the same manner as in Production Example 1, except that the amount of water mixed with 3.8 parts of 25% ammonia water at the time of magnetite particle production was changed from 100 parts to 33.8 parts.
  • Production Example 6 Magnetic silica particles (S6) were obtained in the same manner as in Production Example 5 except that the rotation speed of the clear mix during emulsification was changed from 6,000 rpm to 7,500 rpm.
  • Production Example 7 Magnetic silica particles (S7) were obtained in the same manner as in Production Example 5 except that the amount of tetraethoxysilane charged was changed from 2.2 parts to 0.5 parts.
  • Production Example 8 Magnetic silica particles (S8) were obtained in the same manner as in Production Example 7, except that the rotation speed of the clear mix during emulsification was changed from 6,000 rpm to 7,500 rpm.
  • Production Example 9 The amount of water mixed with 3.8 parts of 25% ammonia water at the time of magnetite particle production was changed from 100 parts to 55 parts, and the charge amount of tetraethoxysilane was changed from 2.2 parts to 1.2 parts, Magnetic silica particles (S9) were obtained in the same manner as in Production Example 2.
  • Comparative production example 1 Magnetic silica particles (H1) were obtained in the same manner as in Production Example 4 except that the amount of tetraethoxysilane charged was changed from 0.5 part to 8.0 parts.
  • Comparative production example 2 Magnetic silica particles (H2) were obtained in the same manner as in Production Example 9 except that the amount of tetraethoxysilane charged was changed from 1.2 parts to 12.5 parts.
  • Comparative production example 3 Magnetic properties were the same as in Production Example 9, except that the amount of tetraethoxysilane charged was changed from 1.2 parts to 8.0 parts, and the rotational speed of the clear mix during emulsification was changed from 7,500 rpm to 6,000 rpm. Silica particles (H3) were obtained.
  • Comparative production example 4 100 parts of ferrous sulfate was dissolved in 1,000 parts of water, and an aqueous solution obtained by dissolving 28.8 parts of sodium hydroxide in 500 parts of water was added dropwise over 1 hour with stirring. The mixture was heated and heated to air, and air was blown into the suspension to oxidize for 8 hours. Then, 2.2 parts of magnetite particles obtained by centrifugation were mixed with 5.7 parts of decane and 2.2 parts of tetraethoxysilane and dispersed. A liquid (R-1) was obtained. Magnetic silica particles (H4) were obtained in the same manner as in Production Example 2, except that the dispersion (A2-1) was replaced with the dispersion (R-1).
  • Comparative Production Example 5 Magnetic silica particles (H5) were obtained in the same manner as in Comparative Production Example 4 except that the amount of tetraethoxysilane charged was changed from 2.2 parts to 12.5 parts.
  • a dispersion (R-2) was obtained by mixing 2.2 parts of magnetite particles (manufactured by Sigma Aldrich Japan) having an average particle diameter of 50 nm with 5.7 parts of decane and 2.2 parts of tetraethoxysilane.
  • Magnetic silica particles (H6) were obtained in the same manner as in Production Example 1, except that the dispersion (A2-1) was replaced with the dispersion (R-2).
  • Example 1 By the following operation, it is composed of a reagent containing magnetic silica particles (anti-AFP antibody-binding magnetic silica particle reagent), a labeling reagent (POD-labeled anti-AFP antibody reagent), a chemiluminescent reagent first solution, and a chemiluminescent reagent second solution.
  • the reagent of the present invention was obtained.
  • Preparation of reagents containing magnetic silica particles 40 mg of the magnetic silica particles (S1) prepared in Production Example 1 were added to a polyethylene bottle with a lid containing 40 mL of an acetone solution containing 1 wt% ⁇ -aminopropyltriethoxysilane, reacted at 25 ° C.
  • the liquid was removed by suction with an aspirator.
  • 40 mL of deionized water was added, the cap was capped, and the polystyrene bottle was slowly inverted and stirred twice.
  • the liquid was sucked and removed with an aspirator to wash the magnetic silica particles. This washing operation was performed three times.
  • the washed magnetic silica particles were added to a polyethylene bottle with a lid containing 40 mL of an aqueous solution containing 2% by weight glutaraldehyde, and reacted at 25 ° C. for 1 hour.
  • the magnetic silica particles were collected with a neodymium magnet, and then the anti-AFP antibody-containing phosphate buffer was removed to produce anti-AFP antibody-bound magnetic silica particles. This is diluted with a 0.02M phosphate buffer (pH 7.0) containing 1% bovine serum albumin to a concentration of 0.5 mg / mL as an anti-AFP antibody-bound magnetic silica particle concentration, and contains magnetic silica particles. Reagents were prepared and stored refrigerated (2-10 ° C.).
  • labeling reagent Using anti-AFP polyclonal antibody (purchased from Dako Japan) and horseradish-derived POD (manufactured by Toyobo Co., Ltd.), literature (S Yoshitake, M Imagawa, E Ishikawa, Etol; J. Biochem, Vol. 92, 1982) 1413-1424), a POD-labeled anti-AFP antibody was prepared. This was diluted with a 0.02M phosphate buffer solution (pH 7.0) containing 1% bovine serum albumin to a concentration of 200 nM as a POD-labeled anti-AFP antibody concentration, and a labeling reagent was prepared and refrigerated (2-10 ° C. ).
  • chemiluminescent reagent first solution A 1,000 mL volumetric flask was charged with 0.7 g of sodium salt of luminol [manufactured by Sigma Aldrich Japan] and 0.1 g of 4- (cyanomethylthio) phenol. 3- [4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazinyl] propanesulfonic acid / sodium hydroxide buffer solution (10 mM, pH 8.6) was charged so that the volume of the solution was 1,000 mL, and even at 25 ° C. A first chemiluminescent reagent solution was prepared by mixing. Refrigerated (2-10 ° C.) until used for measurement.
  • chemiluminescent reagent second solution 6.6 g of hydrogen peroxide [manufactured by Wako Pure Chemical Industries, reagent special grade, concentration 30 wt%] was charged into a 1,000 mL volumetric flask. Deionized water was charged so that the volume of the solution was 1,000 mL, and the mixture was uniformly mixed at 25 ° C. to prepare a second solution of the chemiluminescent reagent. Refrigerated (2-10 ° C.) until used for measurement.
  • Examples 2 to 9 and Comparative Examples 1 to 6 The magnetic silica particles (S1) are replaced with magnetic silica particles (S2) to (S9) or (H1) to (H6), and the magnetic silica particles of the present invention or for comparison are contained in the same manner as in Example 1.
  • a reagent of the present invention comprising a reagent, a labeling reagent, a chemiluminescent reagent first solution and a chemiluminescent reagent second solution was obtained.
  • Table 1 shows the results of evaluating the cleaning property and sensitivity in immunoassay in a short time by the following method using the obtained reagent.
  • the average particle diameter of the superparamagnetic metal oxide, the average particle diameter of the magnetic silica particles, and the superparamagnetic metal were measured by the following method.
  • Table 1 shows the results of measuring the oxide content and evaluating the magnetic collection, redispersibility and reaggregation.
  • ⁇ Evaluation method of detergency and sensitivity in immunoassay in a short time using the reagent of the present invention > 0.025 mL of a reagent containing magnetic silica particles and 0.025 mL of a standard AFP solution prepared with a phosphate buffer containing 1% by weight of bovine serum albumin and having an AFP concentration of 2 ng / mL are placed in a test tube and mixed. The mixture was reacted at 37 ° C. for 3 minutes in a test tube to form an anti-AFP antibody-bound magnetic silica particle / AFP complex.
  • the detergency was determined according to the following criteria from the average luminescence amount when immunoassay was performed using a standard solution having an AFP concentration of 0 ng / mL. ⁇ : Less than 10,000 cps ⁇ : 10,000 cps or more and less than 30,000 cps ⁇ : 30,000 cps or more For sensitivity, when immunoassay was performed using standard solutions with AFP concentrations of 0 ng / mL and 2 ng / mL The determination was made according to the following criteria from the difference in the amount of luminescence. ⁇ : 25,000 cps or more ⁇ : 10,000 cps or more and less than 25,000 cps ⁇ : less than 10,000 cps
  • ⁇ Measuring method of average particle diameter of superparamagnetic metal oxide Any 200 superparamagnetic metal oxides were observed with a scanning electron microscope to measure the particle diameter, and the average value was taken as the average particle diameter.
  • ⁇ Measuring method of average particle diameter of magnetic silica particles About 200 arbitrary magnetic silica particles, it observed with the scanning electron microscope, the particle diameter was measured, and the average value was made into the average particle diameter.
  • ⁇ Method for measuring content of superparamagnetic metal oxide in magnetic silica particles> Arbitrary 20 magnetic silica particles were observed with a scanning electron microscope, and the content of superparamagnetic metal oxide was measured with an energy dispersive X-ray spectrometer, and the average value was taken as the content.
  • ⁇ Method for evaluating re-aggregation of magnetic silica particles The number of aggregated particles relative to the total number of particles in the field of view is the same as the above redispersibility evaluation method except that the time until observation with a microscope is changed from within 10 seconds to 5 minutes after mixing by pipetting three times. The ratio was calculated and judged according to the following criteria. ⁇ : Aggregated particles are less than 5% ⁇ : Aggregated particles are 5% or more and less than 20% ⁇ : Aggregated particles are 20% or more
  • the method for measuring a substance to be measured using the magnetic silica particles of the present invention is excellent in the magnetic properties of the magnetic silica particles and the redispersibility of the particles after the magnetic collection. Therefore, it can be widely applied to clinical tests such as radioimmunoassay, enzyme immunoassay, fluorescence immunoassay, and chemiluminescence immunoassay.
  • the reagent of the present invention is suitable for use in the above-described measurement method, and similarly, as a clinical test agent such as radioimmunoassay, enzyme immunoassay, fluorescent immunoassay, chemiluminescence immunoassay and the like. Can be used.

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Abstract

本発明の測定対象物質測定方法は、平均粒子径が１～１５ｎｍの超常磁性金属酸化物を６０～９５重量％含有するシリカ粒子の表面に、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化された磁性シリカ粒子を用いて試料中の測定対象物質を測定することを特徴とする。

Description

磁性シリカ粒子を用いた測定方法及び該測定方法用試薬
本発明は、磁性シリカ粒子を用いた測定対象物質測定方法及び該方法に用いられる試薬に関する。更に詳しくは、診断の補助、治療効果確認の補助、タンパク質精製時及び細胞分離時の精製度の確認等に用いる測定方法及び試薬に関する。
従来、生体物質を含有する試料、例えば生体サンプル中のタンパク質等を測定又は精製する方法としてタンパク質が結合し得る粒子表面に生体サンプル中のタンパク質等を結合させ、生体サンプル中の目的タンパク質等以外の不純物を除くために、粒子を洗浄しタンパク質等が結合した粒子を回収して、タンパク質の結合量を測定する方法やタンパク質解離溶液中に解離させて精製する方法が知られている。
また、磁力によって容易に分離、回収が可能であることから、磁性を有する粒子が用いられており、例えば特許文献１には、酸化鉄からなる芯粒子の表面にシリカの被膜が形成されてなる磁性シリカ粒子が記載されている。しかし、この磁性粒子は、磁性体が強磁性であり、回収時の磁場を取り除いても強磁性により磁性体自身が一時的な磁場を示し粒子同士が自己会合し、洗浄性が悪い及び／又は次の操作（例えば、免疫反応）に悪影響を及ぼすという問題がある。
更に、強磁性による磁性体自身の自己会合を解決する目的で、例えば、特許文献２には、磁性体に超常磁性である磁性体を用いた磁性シリカ粒子が開示されている。しかし、この磁性粒子は、粒子径が小さい場合は、磁性体の含有量が低く、磁力で粒子を回収する際に時間がかかり、粒子径が大きい場合は、比表面積が小さいために、結合するタンパク質等の量が少ないという問題がある。
特開２０００－２５６３８８号公報 特開２０００－４０６０８号公報
本発明は、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質を担持させる際の結合性に優れ、且つ、磁力による回収性及び磁力を除去した状態での分散性に優れ、短時間の洗浄工程でも免疫測定において優れた感度を出し得る磁性シリカ粒子を用いた測定対象物質測定方法、及び、該測定法用試薬を提供することを目的とする。
本発明者らは、上記目的を達成すべく鋭意検討した結果、本発明に到達した。即ち本発明は、平均粒子径が１～１５ｎｍの超常磁性金属酸化物を６０～９５重量％含有するシリカ粒子の表面に、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化された磁性シリカ粒子を用いて試料中の測定対象物質を測定することを特徴とする測定対象物質測定方法、及び、平均粒子径が１～１５ｎｍの超常磁性金属酸化物を６０～９５重量％含有するシリカ粒子の表面に、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化された磁性シリカ粒子を含有することを特徴とする上記測定方法用の試薬である。
本発明の測定方法及び試薬においては、磁性シリカ粒子を磁気を用いて回収することにより簡便なＢ／Ｆ分離を可能とする。また、磁性シリカ粒子が超常磁性金属酸化物を含むものであるため、その磁気特性により集磁後の粒子の再分散性に優れ、その結果、短時間に高感度で測定対象物質を測定（検出）することができる。
本発明における測定対象物質としては、通常この分野で測定されるものであれば特に限定はされず、例えば血清，血液，血漿，尿等の生体体液、リンパ液、血球、各種細胞類等の生体由来の試料中に含まれるタンパク質、脂質タンパク質、核酸、免疫グロブリン、血液凝固関連因子、抗体、酵素、ホルモン、癌マーカー、心疾患マーカー及び各種薬物等が代表的なものとして挙げられる。更に具体的には、例えばアルブミン，ヘモグロビン，ミオグロビン，トランスフェリン，プロテインＡ，Ｃ反応性蛋白質（ＣＲＰ）等のタンパク質、例えば高比重リポ蛋白質（ＨＤＬ），低比重リポ蛋白質（ＬＤＬ），超低比重リポ蛋白質等の脂質蛋白質、例えばデオキシリボ核酸（ＤＮＡ），リボ核酸（ＲＮＡ）等の核酸、例えばアルカリ性ホスファターゼ，アミラーゼ，酸性ホスファターゼ，γ－グルタミルトランスフェラーゼ（γ－ＧＴＰ），リパーゼ，クレアチンキナーゼ（ＣＫ），乳酸脱水素酵素（ＬＤＨ），グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼ（ＧＯＴ），グルタミン酸ピルビン酸トランスアミナーゼ（ＧＰＴ），レニン，プロテインキナーゼ（ＰＫ），チロシンキナーゼ等の酵素、例えばＩｇＧ，ＩｇＭ，ＩｇＡ，ＩｇＤ，ＩｇＥ等の免疫グロブリン（或いはこれらの、例えばＦｃ部，Ｆａｂ部，Ｆ（ａｂ）２部等の断片）、例えばフィブリノーゲン，フィブリン分解産物（ＦＤＰ），プロトロンビン，トロンビン等の血液凝固関連因子、例えば抗ストレプトリジンＯ抗体，抗ヒトＢ型肝炎ウイルス表面抗原抗体（ＨＢｓ抗原），抗ヒトＣ型肝炎ウイルス抗体，抗リュウマチ因子等の抗体、例えば甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ），甲状腺ホルモン（ＦＴ３，ＦＴ４，Ｔ３，Ｔ４），副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ），ヒト絨毛性ゴナドトロピン（ｈＣＧ）エストラジオール（Ｅ２）等のホルモン、例えばα－フェトプロテイン（ＡＦＰ），癌胎児性抗原（ＣＥＡ），ＣＡ１９－９，前立腺特異抗原（ＰＳＡ）等の癌マーカー、例えばトロポニンＴ（ＴｎＴ），ヒト脳性ナトリウム利尿ペプチド前駆体Ｎ端フラグメント（ＮＴ－ｐｒｏＢＮＰ）等の心疾患マーカー、例えば抗てんかん薬，抗生物質，テオフィリン等の薬物等が挙げられる。上記したものの中でも、抗体、ホルモン、癌マーカー、心疾患マーカー等が好ましい。
本発明における測定対象物質の類似物質（アナログ）は、測定対象物質と特異的に結合する物質（測定対象物質結合物質）が有する測定対象物質との結合部位と結合し得るもの、言い換えれば、測定対象物質が有する測定対象物質結合物質との結合部位を有するもの、更に言い換えれば、測定対象物質と測定対象物質結合物質との反応時に共存させると該反応と競合し得るものであれば何れでもよい。
本発明における測定対象物質と特異的に結合する物質（測定対象物質結合物質）としては、例えば「抗原」－「抗体」間反応、「糖鎖」－「タンパク質」間反応、「糖鎖」－「レクチン」間反応、「酵素」－「インヒビター」間反応、「タンパク質」－「ペプチド鎖」間反応、「染色体又はヌクレオチド鎖」－「ヌクレオチド鎖」間反応、又は、「ヌクレオチド鎖」－「タンパク質」間反応等の相互反応によって測定対象物質又はその類似物質と結合するもの等が挙げられ、上記各組合せに於いて何れか一方が測定対象物質又はその類似物質である場合、他の一方がこの測定対象物質結合物質である。例えば、測定対象物質又はその類似物質が「抗原」であるときは測定対象物質結合物質は「抗体」であり、測定対象物質又はその類似物質が「抗体」であるときは測定対象物質結合物質は「抗原」である（以下、その他の上記各組合せにおいても同様である）。
具体的には、例えばヌクレオチド鎖（オリゴヌクレオチド鎖、ポリヌクレオチド鎖）；染色体；ペプチド鎖（例えばＣ－ペプチド、アンジオテンシンＩ等）；タンパク質〔例えばプロカルシトニン、免疫グロブリンＡ（ＩｇＡ）、免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）、免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）、免疫グロブリンＭ（ＩｇＭ）、免疫グロブリンＤ（ＩｇＤ）、β２－ミクログロブリン、アルブミン、これらの分解産物、フェリチン等の血清タンパク質〕；酵素〔例えばアミラーゼ（例えば膵型，唾液腺型，Ｘ型等）、アルカリホスファターゼ（例えば肝性，骨性，胎盤性，小腸性等）、酸性ホスファターゼ（例えばＰＡＰ等）、γ－グルタミルトランスファラーゼ（例えば腎性，膵性，肝性等）、リパーゼ（例えば膵型，胃型等）、クレアチンキナーゼ（例えばＣＫ－１，ＣＫ－２，ｍＣＫ等）、乳酸脱水素酵素（例えばＬＤＨ１～ＬＤＨ５等）、グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼ（例えばＡＳＴｍ，ＡＳＴｓ等）、グルタミン酸ピルビン酸トランスアミナーゼ（例えばＡＬＴｍ，ＡＬＴｓ等）、コリンエステラーゼ（例えばＣｈＥ１～ＣｈＥ５等）、ロイシンアミノペプチダーゼ（例えばＣ－ＬＡＰ，ＡＡ，ＣＡＰ等）、レニン、プロテインキナーゼ、チロシンキナーゼ等〕及びこれら酵素のインヒビター，ホルモン（例えばＰＴＨ，ＴＳＨ，インシュリン，ＬＨ，ＦＳＨ，プロラクチン等）、レセプター（例えばエストロゲン，ＴＳＨ等に対するレセプター）；リガンド（例えばエストロゲン，ＴＳＨ等）；例えば細菌（例えば結核菌，肺炎球菌，ジフテリア菌，髄膜炎菌，淋菌，ブドウ球菌，レンサ球菌，腸内細菌，大腸菌，ヘリコバクター・ピロリ等）、ウイルス（例えばルベラウイルス，ヘルペスウイルス，肝炎ウイルス，ＡＴＬウイルス，ＡＩＤＳウイルス，インフルエンザウイルス，アデノウイルス，エンテロウイルス，ポリオウイルス，ＥＢウイルス，ＨＡＶ，ＨＢＶ，ＨＣＶ，ＨＩＶ，ＨＴＬＶ等）、真菌（例えばカンジダ，クリプトコッカス等）、スピロヘータ（例えばレプトスピラ，梅毒トレポネーマ等）、クラミジア、マイコプラズマ等の微生物；当該微生物に由来するタンパク質又はペプチド或いは糖鎖抗原；気管支喘息，アレルギー性鼻炎，アトピー性皮膚炎等のアレルギーの原因となる各種アレルゲン（例えばハウスダスト、例えばコナヒョウダニ，ヤケヒョウダニ等のダニ類、例えばスギ、ヒノキ、スズメノヒエ，ブタクサ，オオアワガエリ，ハルガヤ，ライムギ等の花粉、例えばネコ，イヌ，カニ等の動物、例えば米，卵白等の食物、真菌、昆虫、木材、薬剤、化学物質等に由来するアレルゲン等）；脂質（例えばリポタンパク質等）；プロテアーゼ（例えばトリプシン，プラスミン，セリンプロテアーゼ等）；腫瘍マーカータンパク抗原（例えばＰＳＡ，ＰＧＩ，ＰＧＩＩ等）；糖鎖抗原〔例えばＡＦＰ（例えばＬ１からＬ３等）、ｈＣＧ（ｈＣＧファミリー）、トランスフェリン、ＩｇＧ、サイログロブリン、Ｄｅｃａｙ－ａｃｃｅｌｅｒａｔｉｎｇ－ｆａｃｔｏｒ（ＤＡＦ）、癌胎児性抗原（例えばＣＥＡ，ＮＣＡ，ＮＣＡ－２，ＮＦＡ等）、ＣＡ１９－９、ＰＩＶＫＡ－ＩＩ、ＣＡ１２５、前立腺特異抗原、癌細胞が産生する特殊な糖鎖を有する腫瘍マーカー糖鎖抗原、ＡＢＯ糖鎖抗原等〕；糖鎖（例えばヒアルロン酸、β－グルカン、上記糖鎖抗原等が有する糖鎖等）；糖鎖に結合するタンパク質（例えばヒアルロン酸結合タンパク、βグルカン結合タンパク等）；リン脂質（例えばカルジオリピン等）；リポ多糖（例えばエンドトキシン等）；化学物質（例えばＴ３，Ｔ４，例えばトリブチルスズ，ノニルフェノール，４－オクチルフェノール，フタル酸ジ－ｎ－ブチル，フタル酸ジシクロヘキシル，ベンゾフェノン，オクタクロロスチレン，フタル酸ジ－２－エチルヘキシル等の環境ホルモン）；人体に投与・接種される各種薬剤及びこれらの代謝物；アプタマー；核酸結合性物質；およびこれらに対する抗体等が挙げられる。尚、本発明に於いて用いられる抗体には、パパインやペプシン等の蛋白質分解酵素、或いは化学的分解により生じるＦａｂ、Ｆ（ａｂ’）２フラグメント等の分解産物も包含される。
上記の如き測定対象物質結合物質としては、「抗原」－「抗体」間反応或いは「糖鎖－タンパク質」間反応によって測定対象物質又はその類似物質と結合するものが好ましい。具体的には、測定対象物質又はその類似物質に対する抗体、測定対象物質又はその類似物質が結合する抗原、或いは、測定対象物質又はその類似物質に結合するタンパク質が好ましく、測定対象物質又はその類似物質に対する抗体、或いは測定対象物質又はその類似物質に結合するタンパク質が更に好ましい。
本発明における磁性シリカ粒子は、シリカのマトリックス中に平均粒子径が１～１５ｎｍで超常磁性を有する金属酸化物を分散させたものである。
本発明における超常磁性金属酸化物の平均粒子径は、任意の２００個の超常磁性金属酸化物について走査型電子顕微鏡で観察して測定された粒子径の平均値である。
超常磁性金属酸化物の平均粒子径は、後述の超常磁性金属酸化物作製時の金属イオン濃度を調節することにより制御することができる。また、通常の分級等の方法によっても超常磁性金属酸化物の平均粒子径を所望の値にすることができる。
超常磁性とは、外部磁場の存在下で物質の個々の原子磁気モーメントが整列し誘発された一時的な磁場を示し、外部磁場を取り除くと、部分的な整列が損なわれ磁場を示さなくなることをいう。
平均粒子径が１～１５ｎｍで超常磁性を示す超常磁性金属酸化物としては、鉄、コバルト、ニッケル及びこれらの合金等の酸化物が挙げられるが、磁界に対する感応性が優れていることから、酸化鉄が特に好ましい。超常磁性金属酸化物は、１種を単独で用いても２種以上を併用してもよい。
平均粒子径が１ｎｍ未満の場合は合成が困難であり、平均粒子径が１５ｎｍを超える場合は得られた磁性シリカ粒子の磁気特性が強磁性となり、実際の用途面において磁場を取り除いても磁性体自身が一時的な磁場を示し粒子同士が自己会合し、洗浄性が悪い及び／又は免疫反応等に悪影響を及ぼすという問題がある。
酸化鉄としては、公知の種々の酸化鉄を用いることができる。酸化鉄の内、特に化学的な安定性に優れることから、マグネタイト、γ－ヘマタイト、マグネタイト－α－ヘマタイト中間酸化鉄及びγ－ヘマタイト－α－ヘマタイト中間酸化鉄が好ましく、大きな飽和磁化を有し、外部磁場に対する感応性が優れていることから、マグネタイトが更に好ましい。
磁性シリカ粒子中の超常磁性金属酸化物の含有量の下限は、通常６０重量％、好ましくは６５重量％であり、上限は通常９５重量％、好ましくは８０重量％である。超常磁性金属酸化物の含有量が６０重量％未満の場合、得られた磁性シリカ粒子の磁性が十分でないため、実際の用途面における分離操作に時間がかかり、９５重量％を超えるものは合成が困難である。
超常磁性金属酸化物の製造方法は、特に限定されないが、Ｍａｓｓａｒｔにより報告されたものをベースとして水溶性鉄塩及びアンモニアを用いる共沈殿法（Ｒ．Ｍａｓｓａｒｔ，ＩＥＥＥ　Ｔｒａｎｓ．Ｍａｇｎ．１９８１，１７，１２４７）、又は、水溶性鉄塩の水溶液中の酸化反応を用いた方法により合成することができる。
磁性シリカ粒子の平均粒子径は、好ましくは１～５μｍ、更に好ましくは１～３μｍである。平均粒子径が１μｍ未満の場合、分離回収の際に時間がかかる傾向にあり、５μｍを超えると、表面積が小さくなり、担持する物質（対象物質、測定対象物質の類似物質又は測定対象物質と特異的に結合する物質）の結合量が低く結合効率が低下する傾向にある。
本発明における磁性シリカ粒子の平均粒子径は、任意の２００個の磁性シリカ粒子について走査型電子顕微鏡（日本電子株式会社製「ＪＳＭ－７０００Ｆ」）で観察して測定された粒子径の平均値である。
磁性シリカ粒子の平均粒子径は、後述の水中油型エマルションを作製する際の混合条件（せん断力等）を調節して水中油型エマルションの粒子径を調整することにより制御することができる。また、磁性シリカ粒子製造時の水洗工程の条件変更又は通常の分級等の方法によっても平均粒子径を所望の値とすることができる。
本発明における磁性シリカ粒子の製造方法としては、例えば平均粒子径が１～１５ｎｍの超常磁性金属酸化物粒子、前記超常磁性金属酸化物粒子１００重量％に対して３０～５００重量％の（アルキル）アルコキシシラン及び分散剤を含有する分散液（Ａ１）、又は更に非水溶性有機溶媒を含有する分散液（Ａ２）と、水、水溶性有機溶媒、非イオン性界面活性剤及び（アルキル）アルコキシシランの加水分解用触媒を含有する溶液（Ｂ）とを混合して、水中油型エマルションを作製し、（アルキル）アルコキシシランの加水分解反応及び縮合反応を行い、超常磁性金属酸化物がシリカに包含された粒子を製造する方法が挙げられる。
（アルキル）アルコキシシランの加水分解反応及び縮合反応後、遠心分離及び磁石により固液分離し、水又はメタノールで洗浄して乾燥することにより磁性シリカ粒子が得られる。
上記及び以下において、（アルキル）アルコキシシランとは、アルキルアルコキシシラン又はアルコキシシランを意味する。
上記分散剤としては、分子内に１個以上のカルボキシル基を有する有機化合物、１個以上のスルホ基を有する有機化合物及び１個以上のカルボキシル基と１個以上のスルホ基を有する有機化合物等が挙げられる。具体的には、以下に例示する（ａ－１）～（ａ－５）の有機化合物等が挙げられ、これらは１種を単独で用いても２種以上を併用してもよい。
（ａ－１）カルボキシル基を２個以上有する有機化合物：
炭素数２～３０の脂肪族ポリカルボン酸（シュウ酸、マロン酸、コハク酸、グルタル酸、アジピン酸、ピメリン酸、スベリン酸、アゼライン酸、セバシン酸、プロパン－１，２，３－トリカルボン酸、クエン酸及びドデカン二酸等の飽和ポリカルボン酸並びにマレイン酸、フマール酸及びイタコン酸等の不飽和ポリカルボン酸等）、炭素数８～３０の芳香族ポリカルボン酸（フタル酸、イソフタル酸、テレフタル酸、トリメリット酸及びピロメリット酸等）及び炭素数５～３０の脂環式ポリカルボン酸（シクロブテン－１，２－ジカルボン酸、シクロペンテン－１，２－ジカルボン酸、フラン－２，３－ジカルボン酸、ビシクロ［２，２，１］ヘプタ－２－エン－２，３－ジカルボン酸及びビシクロ［２，２，１］ヘプタ－２，５－ジエン－２，３－ジカルボン酸等）等。
（ａ－２）スルホ基を２個以上有する有機化合物：
炭素数１～３０の脂肪族ポリスルホン酸（メチオン酸、１，１－エタンジスルホン酸、１，２－エタンジスルホン酸、１，１－プロパンジスルホン酸、１，３－プロパンジスルホン酸及びポリビニルスルホン酸等）、炭素数６～３０の芳香族ポリスルホン酸（ｍ－ベンゼンジスルホン酸、１，４－ナフタレンスルホン酸、１，５－ナフタレンジスルホン酸、１，６－ナフタレンジスルホン酸、２，６－ナフタレンジスルホン酸、２，７－ナフタレンジスルホン酸及びスルホン化ポリスチレン等）、ビス（フルオロスルホニル）イミド及び炭素数２～１０のビス（パーフルオロアルカンスルホニル）イミド［ビス（トリフルオロメタンスルホニル）イミド、ビス（ペンタフルオロエタンスルホニル）イミド、ビス（ノナフルオロブタンスルホニル）イミド、ペンタフルオロエタンスルホニルトリフルオロメタンスルホニルイミド、トリフルオロメタンスルホニルヘプタフルオロプロパンスルホニルイミド、ノナフルオロブタンスルホニルトリフルオロメタンスルホニルイミド等］等。
（ａ－３）カルボキシル基とスルホ基をそれぞれ１個以上有する有機化合物：
炭素数２～３０のスルホカルボン酸（スルホ酢酸及びスルホコハク酸等）及び炭素数７～３０のスルホ芳香族モノ又はポリカルボン酸（ｏ－、ｍ－又はｐ－スルホ安息香酸、２，４－ジスルホ安息香酸、３－スルホフタル酸、３，５－ジスルホフタル酸、４－スルホイソフタル酸、２－スルホテレフタル酸、２－メチル－４－スルホ安息香酸、２－メチル－３，５－ジスルホ安息香酸、４－プロピル－３－スルホ安息香酸、４－イソプロピル－３－スルホ安息香酸、２，４，６－トリメチル－３－スルホ安息香酸、２－メチル－５－スルホテレフタル酸、５－メチル－４－スルホイソフタル酸、５－スルホサリチル酸及び３－オキシ－４－スルホ安息香酸等）等。
（ａ－４）カルボキシル基を１個有する有機化合物：
炭素数１～３０の脂肪族飽和モノカルボン酸（ギ酸、酢酸、プロピオン酸、酪酸、イソ酪酸、吉草酸、カプロン酸、エナント酸、カプリル酸、ベラルゴン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、ステアリン酸及びベヘニン酸等）、炭素数３～３０の脂肪族不飽和モノカルボン酸（アクリル酸、メタクリル酸、オレイン酸等）、炭素数３～３０のヒドロキシ脂肪族モノカルボン酸（グリコール酸、乳酸及び酒石酸等）、炭素数４～３０の脂環式モノカルボン酸（シクロプロパンカルボン酸、シクロペンタンカルボン酸及びシクロヘキサンカルボン酸等）、炭素数７～３０の芳香族モノカルボン酸（安息香酸、ケイ皮酸及びナフトエ酸等）、炭素数７～２０のヒドロキシ芳香族モノカルボン酸（サリチル酸及びマンデル酸等）及び炭素数２～２０のパーフルオロカルボン酸（トリフルオロ酢酸、ウンデカフルオロヘキサン酸、トリデカフルオロヘプタン酸、パーフルオロオクタン酸、ペンタデカフルオロオクタン酸、ペプタデカフルオロノナン酸及びノナデカフルオロデカン酸等）等。
（ａ－５）スルホ基を１個有する有機化合物：
炭素数１～３０の脂肪族モノスルホン酸（メタンスルホン酸、エタンスルホン酸、プロパンスルホン酸、ブタンスルホン酸、ヘキサンスルホン酸、デカンスルホン酸、ウンデカンスルホン酸及びドデカンスルホン酸等）、炭素数６～３０の芳香族モノスルホン酸（ベンゼンスルホン酸、ｐ－トルエンスルホン酸、ｏ－トルエンスルホン酸、ｍ－トルエンスルホン酸、４－ドデシルベンゼンスルホン酸、４－オクチルベンゼンスルホン酸及びナフタレンスルホン酸等）及び炭素数１～２０のパーフルオロアルカンスルホン酸（トリフルオロメタンスルホン酸等）等。
これらの内、（アルキル）アルコキシシランとの相溶性の観点から（ａ－４）の内の炭素数１０～３０の有機化合物が好ましい。
分散剤の使用量は、超常磁性金属酸化物の重量を基準として、１００～２，０００重量％、特に２５０～１，０００重量％であることが好ましい。分散剤が１００重量％未満の場合、超常磁性金属酸化物が（アルキル）アルコキシシラン溶液に分散しにくい傾向にあり、２，０００重量％を超えると後の工程の水溶液への分散の際にエマルションが形成しにくい傾向にある。
使用する（アルキル）アルコキシシランとしては、下記一般式（１）で表される化合物が挙げられる。
　　　　　　　Ｒ１ （４－ｎ）Ｓｉ（ＯＲ２）ｎ　　　　　　（１）
一般式（１）中、Ｒ１及びＲ２は、アミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基又はグリシジルオキシ基で置換されていてもよい炭素数１～１０の１価の炭化水素基を表す。
炭素数１～１０の炭化水素基としては、炭素数１～１０の脂肪族炭化水素基（メチル基、エチル基、ｎ－又はｉｓｏ－プロピル基、ｎ－又はｉｓｏ－ブチル基、ｎ－又はｉｓｏ－ペンチル基及びビニル基等）、炭素数６～１０の芳香族炭化水素基（フェニル基等）及び炭素数７～１０の芳香脂肪族基（ベンジル基等）等が挙げられる。
一般式（１）におけるｎは１～４の整数を表す。但し、ｎが１のアルキルアルコキシシランを用いる場合は、ｎが２～４の（アルキル）アルコキシシランと併用する必要がある。反応後の粒子の強度及び粒子表面のシラノール基の量の観点からｎは４であることが好ましい。
一般式（１）で表される化合物の具体例としては、テトラメトキシシラン、テトラエトキシシラン、テトライソプロポキシシラン及びテトラブトキシシラン等のアルコキシシラン；メチルトリメトキシシラン及びメチルトリエトキシシラン等のアルキルアルコキシシラン；３－アミノプロピルトリメトキシシラン、３－アミノプロピルトリエトキシシラン、Ｎ－２（アミノエチル）３－アミノプロピルトリメトキシシラン及びＮ－２（アミノエチル）３－アミノプロピルトリエトキシシラン等のアミノ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシラン；７－カルボキシ－ヘプチルトリエトキシシラン及び５－カルボキシ－ペンチルトリエトキシシラン等のカルボキシル基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシラン；３－ヒドロキシプロピルトリメトキシシラン及び３－ヒドロキシプロピルトリエトキシシラン等の水酸基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシラン；３－メルカプトプロピルトリメトキシシラン及び３－メルカプトプロピルトリエトキシシラン等のメルカプト基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシラン；３－グリシジルオキシプロピルトリメトキシシラン及び３－グリシジルオキシプロピルトリエトキシシラン等のグリシジルオキシ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシラン等が挙げられる。
（アルキル）アルコキシシランは、１種類を単独で用いても２種以上を併用してもよい。
（アルキル）アルコキシシランの使用量は、超常磁性金属酸化物１００重量％に対して、通常３０～５００重量％、好ましくは４０～２００重量％である。（アルキル）アルコキシシランが３０重量％未満の場合、超常磁性金属酸化物の表面が均一に被覆されにくくなり、５００重量％を超えると、超常磁性金属酸化物の含有率が小さくなり、磁力による回収時間が長くなる。
水の使用量は、超常磁性金属酸化物１００重量％に対して５００～３，０００重量％であることが好ましく、特に８００～２，０００重量％が好ましい。
非水溶性有機溶媒としては、２５℃における水への溶解度が０．１ｇ／水１００ｇ以下である、炭素数６～１６の芳香族炭化水素溶剤（トルエン及びキシレン等）及び炭素数５～１６脂肪族炭化水素溶剤（ｎ－ヘプタン、ｎ－ヘキサン、シクロヘキサン、ｎ－オクタン、デカン及びデカヒドロナフタレン等）等が挙げられる。これらは、１種類を単独で用いても２種以上を併用してもよい。
非水溶性有機溶媒の使用量は、超常磁性金属酸化物１００重量％に対して、２００～１，０００重量％、特に２５０～５００重量％が好ましい。有機溶媒の使用量が２００重量％未満であると超常磁性金属酸化物の分散性が悪くなる傾向にあり、１，０００重量％を超えると、磁性シリカ粒子の粒子径が不均一になる傾向にある。
水溶性有機溶媒としては、２５℃における水への溶解度が１００ｇ／水１００ｇ以上である、炭素数１～３のアルコール（メタノール、エタノール及びｎ－又はｉｓｏ－プロパノール等）、炭素数２～９のグリコール（エチレングリコール及びジエチレングリコール等）、アミド（Ｎ－メチルピロリドン等）、ケトン（アセトン等）、環状エーテル（テトラヒドロフラン及びテトラヒドロピラン等）、ラクトン（γ－ブチロラクトン等）、スルホキシド（ジメチルスルホキシド等）及びニトリル（アセトニトリル等）等が挙げられる。
これらの内、磁性シリカ粒子の粒子径の均一性の観点から、炭素数１～４のアルコールが好ましい。
水溶性有機溶媒は、１種類を単独で用いても２種以上を併用してもよい。
水溶性有機溶媒の使用量は、水１００重量％に対して、１００～５００重量％であることが好ましい。
非イオン性界面活性剤としては、高級アルコールアルキレンオキサイド（以下、ＡＯと略記）付加物；炭素数８～２４の高級アルコール（デシルアルコール、ドデシルアルコール、ヤシ油アルキルアルコール、オクタデシルアルコール及びオレイルアルコール等）のエチレンオキサイド（以下、ＥＯと略記）１～２０モル及び／又はプロピレンオキサイド（以下、ＰＯと略記）１～２０モル付加物（ブロック付加物及び／又はランダム付加物を含む。以下同様）、炭素数６～２４のアルキルを有するアルキルフェノールのＡＯ付加物；オクチル又はノニルフェノールのＥＯ１～２０モル及び／又はＰＯ１～２０モル付加物、ポリプロピレングリコールＥＯ付加物及びポリエチレングリコールＰＯ付加物；プルロニック型界面活性剤等、脂肪酸ＡＯ付加物；炭素数８～２４の脂肪酸（デカン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸及びヤシ油脂肪酸等）のＥＯ１～２０モル及び／又はＰＯ１～２０モル付加物等及び多価アルコール型非イオン性界面活性剤；炭素数３～３６の２～８価の多価アルコール（グリセリン、トリメチロールプロパン、ペンタエリスリトール、ソルビット及びソルビタン等）のＥＯ及び／又はＰＯ付加物；前記多価アルコールの脂肪酸エステル及びそのＥＯ付加物［ＴＷＥＥＮ（登録商標）２０及びＴＷＥＥＮ（登録商標）８０等］；アルキルグルコシド（Ｎ－オクチル－β－Ｄ－マルトシド、ｎ－ドデカノイルスクロース及びｎ－オクチル－β－Ｄ－グルコピラノシド等）；砂糖の脂肪酸エステル、脂肪酸アルカノールアミド及びこれらのＡＯ付加物（ポリオキシエチレン脂肪酸アルカノールアミド等）；等の非イオン性界面活性剤が挙げられる。これらは、１種類を単独で用いても２種以上を併用してもよい。
非イオン性界面活性剤の使用量は、超常磁性金属酸化物１００重量％に対して、１００～１，０００重量％、特に３００～５００重量％が好ましい。１００重量％未満又は１，０００重量％を超えると、エマルションが安定せず、生成する粒子の粒度分布が広くなる傾向がある。
非イオン性界面活性剤を含む水溶液の使用量は、超常磁性金属酸化物１００重量％に対して、１，０００～１０，０００重量％、特に１，５００～４，０００重量％が好ましい。１，０００重量％未満又は１０，０００重量％を超えると、エマルションが安定せず、生成する粒子の粒度分布が広くなる傾向がある。
（アルキル）アルコキシシランの加水分解用触媒としては、ルイス酸や塩酸等を用いることができ、具体的には、塩酸等の無機酸、酢酸等の有機酸、アンモニア等の無機塩基化合物、エタノールアミン等のアミン化合物を用いることができる。
加水分解用触媒の使用量は、（アルキル）アルコキシシランの重量に対して、０．０１～１００重量％、特に０．２～５０重量％が好ましい。
分散液（Ａ１）又は分散液（Ａ２）と、溶液（Ｂ）との混合方法は、特に限定されず、後述の設備を使用して一括混合することもできるが、磁性シリカ粒子の粒子径の均一性の観点から、溶液（Ｂ）を撹拌しながら分散液（Ａ１）又は分散液（Ａ２）を滴下する方法が好ましい。
分散液（Ａ１）又は分散液（Ａ２）と溶液（Ｂ）とを混合する際の設備としては、一般に乳化機、分散機として市販されているものであれば特に限定されず、例えば、ホモジナイザー（ＩＫＡ社製）、ポリトロン（キネマティカ社製）及びＴＫオートホモミキサー（特殊機化工業社製）等のバッチ式乳化機、エバラマイルダー（荏原製作所社製）、ＴＫフィルミックス、ＴＫパイプラインホモミキサー（特殊機化工業社製）、コロイドミル（神鋼パンテック社製）、クリアミックス（エムテクニック社製）、スラッシャー、トリゴナル湿式微粉砕機（三井三池化工機社製）、キャピトロン（ユーロテック社製）及びファインフローミル（太平洋機工社製）等の連続式乳化機、マイクロフルイダイザー（みずほ工業社製）、ナノマイザー（ナノマイザー社製）及びＡＰＶガウリン（ガウリン社製）等の高圧乳化機、膜乳化機（冷化工業社製）等の膜乳化機、バイブロミキサー（冷化工業社製）等の振動式乳化機、超音波ホモジナイザー（ブランソン社製）等の超音波乳化機等が挙げられ、粒子径の均一化の観点から、ＡＰＶガウリン、ホモジナイザー、ＴＫオートホモミキサー、エバラマイルダー、ＴＫフィルミックス、ＴＫパイプラインホモミキサー及びクリアミックスが好ましい。
（アルキル）アルコキシシランの加水分解反応及び縮合反応の温度は、２５～１００℃であることが好ましく、更に好ましくは４５～６０℃である。また、反応時間は、好ましくは０．５～５時間、更に好ましくは１～２時間である。
本発明における磁性シリカ粒子は、超常磁性金属酸化物がシリカに包含され、粒子表面に存在しないことから、多くの測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は測定対象物質と特異的に結合する物質をその表面に固定化することができる。
本発明における磁性シリカ粒子に、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質（以下、これらを総称して担持用物質と略記する場合がある）を固定化する方法としては、上述の磁性シリカ粒子に担持用物質を物理吸着させる方法が挙げられるが、より効率良く担持用物質を固定化させる観点から、グルタルアルデヒド、アルブミン、カルボジイミド、ストレプトアビジン、ビオチン及び官能基を有するアルキルアルコキシシランからなる群から選ばれる少なくとも１種の有機化合物を磁性シリカ粒子表面に結合させ、それらを介して担持用物質を磁性シリカ粒子に固定化させるのが好ましい。これらの有機化合物の内、特定の担持用物質を結合させる観点から、官能基を有するアルキルアルコキシシランが更に好ましい。
上記アルキルアルコキシシランが有する官能基としては、アミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基及びグリシジルオキシ基等が挙げられ、アルキルアルコキシシラン１分子中に異なる種類の官能基を有していてもよい。
磁性シリカ粒子の表面に官能基を有するアルキルアルコキシシランを結合させる方法としては、磁性シリカ粒子を作製する際の（アルキル）アルコキシシランとして、前述のアミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基又はグリシジルオキシ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシランを使用する方法、又は、これらの置換基を有しない（アルキル）アルコキシシランを使用して磁性シリカ粒子を作製した後、磁性シリカ粒子をアミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基又はグリシジルオキシ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシランで処理する方法等が挙げられる。
後者の方法の具体例としては、磁性シリカ粒子をその濃度が１～５０重量％になるように溶媒に分散し、この分散液にアミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基又はグリシジルオキシ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシランの溶液を添加して、１時間以上室温で加水分解反応及び縮合反応を行う方法が挙げられる。
この方法における溶媒は、用いるアルキルアルコキシシランの溶解性に応じて適宜選択され、水に可溶なアミノ基、カルボキシル基、水酸基又はメルカプト基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシランを用いる場合は、水又は水－アルコールの混合溶媒等を用いることが好ましく、水に溶解しにくいグリシジルオキシ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシランを用いる場合、酢酸ブチル等を用いることが好ましい。
アミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基又はグリシジルオキシ基で置換されたアルキル基を有するアルキルアルコキシシランの使用量は、処理前の磁性シリカ粒子に対して０．１～５重量％であることが好ましい。０．１重量％未満であると、導入される官能基数が充分でない場合があり、５重量％を超えると、粒子表面の官能基量を更に増加させる効果が少なくなる傾向にある。
グルタルアルデヒド、アルブミン、カルボジイミド、ストレプトアビジン又はビオチンを磁性シリカ粒子の表面に結合させる方法は特に限定されないが、例えば、以下のようにして結合させることができる。
アルデヒド基を有するグルタルアルデヒド及びカルボキシル基を有するビオチンは、アミノ基を有するアルキルアルコキシシランが表面に結合した磁性シリカ粒子と反応させることで、磁性シリカ粒子の表面に結合させることができる。また、アミノ基を有するアルブミン及びストレプトアビジン並びにカルボジイミド基を有するカルボジイミドは、カルボキシル基を有するアルキルアルコキシシランが表面に結合した磁性シリカ粒子と反応させることで、磁性シリカ粒子の表面に結合させることができる。
本発明の測定対象物質測定方法は、上記本発明における磁性シリカ粒子を用いて行われる以外はこの分野で通常行われる、文献［例えば、酵素免疫測定法第２版（石川栄治ら編集、医学書院）１９８２年］記載のサンドイッチ法、競合法及び特開平６－１３００６３号公報記載の測定法に準じて行えばよい。
サンドイッチ法は、例えば、測定対象物質を含む試料と、測定対象物質と特異的に結合する物質（測定対象物質結合物質）を表面に固定化した磁性シリカ粒子と、標識物質により標識された測定対象物質結合物質（標識測定対象物質結合物質）とを接触させて、磁性シリカ粒子上に測定対象物質結合物質と測定対象物質と標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）を形成させ、該標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定することによりなされる。
具体的には例えば、測定対象物質を含む試料と測定対象物質結合物質を表面に固定化した磁性シリカ粒子とを接触させて、磁性シリカ粒子表面に測定対象物質結合物質と測定対象物質との複合体を形成させ、更に該複合体に、標識測定対象物質結合物質を接触させて、磁性シリカ粒子に担持された測定対象物質結合物質と測定対象物質と標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）を形成させ、該標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定すればよい。該方法に於いては、測定対象物質と測定対象物質結合物質が固定化された磁性シリカ粒子とを反応させた後、標識測定対象物質結合物質を反応させているが、標識測定対象物質結合物質と測定対象物質とを反応させた後に測定対象物質結合物質が固定化された磁性シリカ粒子とを反応させても、これら３つを同時に反応させても構わない。
上記サンドイッチ法におけるＢ／Ｆ分離とは、上記標識複合体と、標識複合体の形成に関与しなかった標識測定対象物質結合物質との分離を意味し、具体的には、磁性シリカ粒子に担持された測定対象物質結合物質、磁性シリカ粒子に担持された測定対象物質結合物質と測定対象物質との複合体、及び、上記の標識複合体と、他の成分（試料中の測定対象物質以外の成分、標識複合体の形成に関与しなかった標識測定対象物質結合物質等）との分離を意味する。
また、Ｂ／Ｆ分離工程は標識複合体の形成後には必須の工程であるが、磁性シリカ粒子表面に測定対象物質結合物質と測定対象物質との複合体を形成させた後においても実施することができる。
競合法の一態様としては、測定対象物質を含む試料、標識物質により標識された測定対象物質と特異的に結合する物質（標識測定対象物質結合物質）、及び、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質をその表面に固定化している磁性シリカ粒子とを接触させて、磁性シリカ粒子上に測定対象物質又はその類似物質と標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）を形成させ、該標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定することによりなされる。
具体的には例えば、測定対象物質を含む試料と、標識測定対象物質結合物質と、測定対象物質又はその類似物質を担持した磁性シリカ粒子とを接触させて、標識測定対象物質結合物質に、試料中の測定対象物質と磁性シリカ粒子上の測定対象物質又はその類似物質と競合反応させて、磁性シリカ粒子上に測定対象物質又はその類似物質と標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）を形成させ、該標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定すればよい。該方法に於いては、測定対象物質、標識測定対象物質結合物質、及び測定対象物質又はその類似物質を担持した磁性シリカ粒子を同時に競合反応させているが、測定対象物質と測定対象物質又はその類似物質を担持した磁性シリカ粒子とを接触させた後に、標識測定対象物質結合物質を加えて競合反応させても、測定対象物質と標識測定対象物質結合物質を接触させた後に、測定対象物質又はその類似物質を担持した磁性シリカ粒子を加えて競合反応させてもよい。
上記競合法におけるＢ／Ｆ分離とは、上記標識複合体と、標識複合体の形成に関与しなかった他の成分（標識測定対象物質結合物質、及び、標識測定対象物質結合物質と測定対象物質の複合体）との分離を意味し、具体的には、測定対象物質又はその類似物質を担持した磁性シリカ粒子、及び、測定対象物質又はその類似物質を担持した磁性シリカ粒子と標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）と、他の成分（試料中の測定対象物質以外の成分、標識測定対象物質結合物質、測定対象物質の複合体等）との分離を意味する。
また、競合法の別の態様としては、測定対象物質を含む試料と、標識物質により標識された測定対象物質又はその類似物質（標識測定対象物質又はその類似物質）と、測定対象物質結合物質を担持した磁性シリカ粒子とを接触させて、磁性シリカ粒子上に測定対象物質結合物質と標識測定対象物質又はその類似物質との複合体（標識複合体）を形成させ、該標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定することによりなされる。
具体的には例えば、測定対象物質を含む試料と、標識測定対象物質又はその類似物質と、測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子とを接触させて、磁性シリカ粒子上の測定対象物質結合物質に、試料中の測定対象物質と標識測定対象物質又はその類似物質とを競合反応させて、磁性シリカ粒子上に測定対象物質結合物質と標識測定対象物質又はその類似物質との複合体（標識複合体）とを形成させ、該標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定すればよい。該競合法に於いては、測定対象物質、標識測定対象物質又はその類似物質、及び、測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子を同時に競合反応させているが、測定対象物質と測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子とを接触させた後に、標識測定対象物質又はその類似物質を加えて競合反応させても、標識測定対象物質又はその類似物質と測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子とを接触させた後に、測定対象物質を加えて競合反応させてもよい。
上記競合法におけるＢ／Ｆ分離とは、上記標識複合体と、標識複合体の形成に関与しなかった他の成分（標識測定対象物質又はその類似物質）との分離を意味し、具体的には、測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子、測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子と測定対象物質との複合体、及び、測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子と標識測定対象物質又はその類似物質との複合体と、他の成分（試料中の測定対象物質以外の成分、標識複合体の形成に関与しなかった標識測定対象物質又はその類似物質等）との分離を意味する。
また、測定対象物質が酵素の場合には、上記サンドイッチ法及び競合法以外の酵素活性方法を用いる方法、例えば、測定対象物質を含む試料と、測定対象物質結合物質（例えば、抗体等の酵素と結合し得る物質）を担持させた磁性シリカ粒子を表面に固定化した磁性シリカ粒子とを接触させて、磁性シリカ粒子上に酵素と測定対象物質結合物質との複合体を形成させ、複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離した後、酵素の種類に応じた基質、又は酵素の種類に応じた基質及び発色剤、要すれば更に共役酵素を添加し、その基質の変化又は発色剤の発色結果に基づいて試料中の酵素量を測定する方法により、測定してもよい。尚、基質、発色剤、共役酵素は、公知のものを用いればよく、例えば酵素がペルオキシダーゼの場合には、過酸化水素とルミノール発光試薬等を用いればよい。これらの使用量も通常この分野で用いられる範囲であればよい。上記方法におけるＢ／Ｆ分離とは、測定対象物質と測定対象物質結合物質を担持させた磁性シリカ粒子との複合体と、その他の成分（試料中の測定対象物質以外の成分等）との分離を意味する。
本発明の測定対象物質測定方法において、試料、磁性シリカ粒子、標識された測定対象物質結合物質、標識測定対象物質又はその類似物質等を接触させる方法としては、通常なされる撹拌、混合等の処理により、磁性シリカ粒子が分散されればよい。反応時間は、測定対象物質、用いられる測定対象物質結合物質、サンドイッチ法、競合法等の違いに応じて適宜設定されればよいが、通常１～１０分、好ましくは１～５分である。
本発明の測定対象物質測定方法におけるＢ／Ｆ分離は、例えば、磁性シリカ粒子の磁性を利用し、反応槽の外側等から磁石等により磁性シリカ粒子を集めて、反応液を排出し、洗浄液を加えた後、磁石を取り除き、磁性シリカ粒子を混合して分散させ、洗浄することによりなされる。上記操作を１～３回繰り返してもよい。洗浄液としては、通常この分野で用いられるものであれば特に限定はされない。
測定対象物質結合物質、測定対象物質又はその類似物質等を標識するために用いられる標識物質としては、例えば酵素免疫測定法（ＥＩＡ）に於いて用いられるアルカリホスファターゼ、β－ガラクトシダーゼ、ペルオキシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコース－６－リン酸脱水素酵素、リンゴ酸脱水素酵素、ルシフェラーゼ、チロシナーゼ、酸性ホスファターゼ等の酵素類、例えば放射免疫測定法（ＲＩＡ）に於いて用いられる99mＴｃ、131Ｉ、125Ｉ、14Ｃ、3Ｈ、32Ｐ等の放射性同位元素、例えば蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）に於いて用いられるフルオレセイン、ダンシル、フルオレスカミン、クマリン、ナフチルアミン或いはこれらの誘導体、グリーン蛍光タンパク質（ＧＦＰ）等の蛍光性物質、例えばルシフェリン、イソルミノール、ルミノール、ビス（２，４，６－トリフロロフェニル）オキザレート等の発光性物質、例えばフェノール、ナフトール、アントラセン或いはこれらの誘導体等の紫外部に吸収を有する物質、例えば４－アミノ－２，２，６，６－テトラメチルピペリジン－１－オキシル、３－アミノ－２，２，５，５－テトラメチルピロリジン－１－オキシル、２，６－ジ－ｔ－ブチル－α－（３，５－ジ－ｔ－ブチル－４－オキソ－２，５－シクロヘキサジエン－１－イリデン）－ｐ－トリオキシル等のオキシル基を有する化合物に代表されるスピンラベル化剤としての性質を有する物質等が挙げられる。
これらの内、感度等の観点から、酵素、蛍光性物質が好ましく、更に好ましいのはアルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ及びグルコースオキシダーゼであり、特に好ましいのはペルオキシダーゼである。
上記した如き標識物質を測定対象物質結合物質、測定対象物質又はその類似物質等に結合させるには、通常この分野で用いられる方法、例えば自体公知のＥＩＡ、ＲＩＡ或いはＦＩＡ等に於いて一般に行われている自体公知の標識方法［例えば、医化学実験講座、第８巻、山村雄一監修、第１版、中山書店、１９７１；図説　蛍光抗体、川生明著、第１版、（株）ソフトサイエンス社、１９８３；酵素免疫測定法、石川栄治、河合忠、室井潔編、第２版、医学書院、１９８２等に記載のグルタルアルデヒド法、過ヨウ素酸法、マレイミド法又はピリジルジスルフィド法等］等を利用すればよい。
標識物質の使用量は、用いる標識物質の種類により異なるため一概には言えないが、例えばペルオキシダーゼを標識物質として使用する場合には、測定対象物質結合物質と標識物質とを、例えば通常１：１～２０のモル比、好ましくは１：１～１０のモル比、更に好ましくは１：１～２のモル比となるように、例えばトリス緩衝液、リン酸緩衝液、ベロナール緩衝液、ホウ酸緩衝液、グッド緩衝液等の通常この分野で用いられている緩衝液中に含有させて用いればよい。尚、当該緩衝液としては、通常この分野で用いられている、例えばトリス緩衝液、リン酸緩衝液、ベロナール緩衝液、ホウ酸緩衝液、グッド緩衝液等が挙げられ、そのｐＨは、抗原抗体反応を抑制しない範囲であればよく、通常５～９である。また、このような緩衝液中には、目的の抗原抗体反応を阻害しないものであれば、例えばアルブミン、グロブリン、水溶性ゼラチン、ポリエチレングリコール等の安定化剤、界面活性剤、糖類等を含有させておいてもよい。
標識物質又はその活性の測定方法としては、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）及び化学発光免疫測定法（ＣＬＩＡ及びＣＬＥＩＡ）が挙げられ、短時間での免疫測定における感度の観点から好ましいのはＥＩＡ、ＣＬＩＡ及びＣＬＥＩＡであり、更に好ましいのはＣＬＥＩＡである。
本願発明の測定方法は、例えばサンドイッチ法でＡＦＰを測定する場合、以下のようにして行えばよい。
即ち、例えばＡＦＰを含む試料１０～２５μＬと例えば本発明における磁性シリカ粒子に抗ＡＦＰ抗体を担持させたものを０．１～１ｍｇ／ｍＬ含むリン酸緩衝液等の緩衝液（磁性シリカ粒子を含有する試薬）４０～５０μＬとを反応槽に添加し、該反応溶液を攪拌し、磁性シリカ粒子を分散させて、磁性シリカ粒子上に担持されている抗ＡＦＰ抗体とＡＦＰとを接触、反応させ、複合体を形成させる。次いで、例えば反応槽の外側から磁石等により磁性シリカ粒子を集め、反応液を排出し、生理食塩水等の洗浄液を添加する。その後、磁石を取り除き、該磁性シリカ粒子を分散させて洗浄する。この操作は、１～３回繰り返してもよい。尚、この洗浄操作は、試料又は磁性シリカ粒子を含有する試薬を残したまま、西洋ワサビ由来等ペルオキシダーゼ（以下ＰＯＤと略記）標識された抗ＡＦＰ抗体（以下標識試薬と略記）を添加して反応させる場合には、この洗浄操作を省略しても構わない。その後、例えば標識試薬を加え、該反応溶液を攪拌し、磁性シリカ粒子を分散させて、ＰＯＤ標識された抗ＡＦＰ抗体と上記複合体とを反応結合させる。次いで、上記の洗浄と同様にして生理食塩水等の洗浄液を加えて分散させて洗浄を行う。最後に例えばルミノール及び過酸化水素を加え、化学発光計にて１秒間の化学発光積算量を測定し、該測定値を基に試料中のＡＦＰ量を算出する。尚、この場合には予め規定のＡＦＰ含有溶液を試料として上記と同様の操作により作られたＡＦＰ量と１秒間の化学発光積算量との関係を示す検量線等を用いることで容易に試料中のＡＦＰ量を算出し得る。
本発明の試薬は、上記本発明における磁性シリカ粒子を含んでなるものであり、上記測定方法に用いられるものである。具体的には、例えば、本発明における磁性シリカ粒子を含む緩衝液等が挙げられ、該緩衝液としては、免疫測定等に通常用いられる緩衝液が好ましく挙げられ、例えば１，４－ピペラジンジエタンスルホン酸／水酸化ナトリウム緩衝液、ＭＯＰＳ［３－（Ｎ－モルホリノ）プロパンスルホン酸］／水酸化ナトリウム緩衝液、トリエタノールアミン／塩酸緩衝液及びＰＢＳ（リン酸緩衝液）等が挙げられる。
これらの緩衝液中の緩衝剤の濃度は、１～５００ｍＭが好ましく、更に好ましくは５～３００ｍＭ、特に好ましくは１０～２００ｍＭである。
上記及び以下において、ｍＭは２５℃での濃度（ミリモル／リットル）を表す。
磁性シリカ粒子の量は、特に限定されず、用いられる測定対象物質結合物質又は測定対象物質の類似物質の種類、測定対象物質の種類等により適宜選択できる。
本発明の試薬は、本発明における磁性シリカ粒子が緩衝液に分散された形態であることが好ましい。
本発明の試薬は、本発明における磁性シリカ粒子を含有する試薬以外に、標識物質により標識された測定対象物質と特異的に結合する物質、或いは、標識物質により標識された、測定対象物質又はその類似物質を含有する試薬（以下、標識試薬と略記する場合がある）を含んでいてもよい。該標識物質は、上記本発明の測定方法の項で記載したものと同じものが挙げられ、好ましいものも同じである。
標識試薬には、標識物質により標識された測定対象物質と特異的に結合する物質、或いは、標識物質により標識された、測定対象物質又はその類似物質以外に緩衝液等を含むことができる。標識試薬に使用される緩衝液としては、免疫測定に通常用いられる緩衝液が好ましく、例えば、上述の磁性シリカ粒子を含む試薬に使用される緩衝液と同様のものが挙げられ、緩衝液中の緩衝剤の濃度も上述の磁性シリカ粒子を含む試薬に使用される場合と同様である。
本発明の試薬は、本発明における磁性シリカ粒子を含有する試薬、及び、標識試薬以外に、化学発光試薬を含んでいてもよく、該化学発光試薬は、上記の標識物質に基づき選択され、例えば、標識物質がＰＯＤである場合、２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物及び化学発光増強剤を必須構成成分としてなる化学発光試薬第１液と、酸化剤及び水を必須構成成分としてなる化学発光試薬第２液とを含んでなる。
２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物としては、例えば、特開平２－２９１２９９号公報、特開平１０－３１９０１５号公報及び特開２０００－２７９１９６号公報等に記載の公知の２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物及びこれらの混合物等が使用できる。
これらの内、ルミノール、イソルミノール、Ｎ－アミノヘキシル－Ｎ－エチルイソルミノール（ＡＨＥＩ）、Ｎ－アミノブチル－Ｎ－エチルイソルミノール（ＡＢＥＩ）及びこれらの金属塩（アルカリ金属塩等）が好ましく、更に好ましいのはルミノール及びその金属塩、特に好ましいのはルミノールのナトリウム塩である。
化学発光試薬における２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物の含有量は、その種類及び適用する測定方法や測定条件等によって適宜設定されるが、化学発光増強効果及び保存安定性等の観点から、０．５～８０ｍＭが好ましく、更に好ましくは１．８～４０ｍＭ、特に好ましくは３．５～２１ｍＭである。
化学発光増強剤としては、例えば、特表昭５９－５００２５２号公報、特開昭５９－１７１８３９号公報及び特開平２－２９１２９９号公報等に記載の公知の化学発光増強剤及びこれらの混合物等が使用できる。
これらの内、化学発光増強効果等の観点から、フェノールが好ましく、更に好ましいのはＰ－ヨードフェノール、４－（シアノメチルチオ）フェノール及び４－シアノメチルチオ－２－クロロフェノール、特に好ましいのは４－（シアノメチルチオ）フェノールである。
化学発光試薬における化学発光増強剤の含有量は、その種類及び適用する測定方法や測定条件等によって適宜設定されるが、化学発光増強効果及び保存安定性等の観点から、０．１～１５ｍＭが好ましく、更に好ましくは０．３～７．０ｍＭ、特に好ましくは０．６～３．４ｍＭである。
化学発光試薬第１液には、２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物及び化学発光増強剤以外に、緩衝液及び／又はキレート剤等を含むことができる。
緩衝液としては、例えば、特開平１０－３１９０１５号公報及び特開２００３－２７９４８９号公報等に記載の公知の緩衝液等が使用できる。
これらの内、化学発光増強効果及び保存安定性等の観点から、３－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］プロパンスルホン酸／水酸化ナトリウム緩衝液、２－ヒドロキシ－３－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］プロパンスルホン酸・１水和物／水酸化ナトリウム緩衝液及びピペラジニル－１，４－ビス（２－ヒドロキシ－３－プロパンスルホン酸）・２水和物／水酸化ナトリウム緩衝液が好ましく、更に好ましいのは３－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］プロパンスルホン酸／水酸化ナトリウム緩衝液及び２－ヒドロキシ－３－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］プロパンスルホン酸・１水和物／水酸化ナトリウム緩衝液、特に好ましいのは３－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］プロパンスルホン酸／水酸化ナトリウム緩衝液である。
これらの緩衝液における緩衝剤の含有量は、化学発光増強効果及び保存安定性等の観点から、１～５００ｍＭが好ましく、更に好ましくは５～３００ｍＭ、特に好ましくは１０～２００ｍＭである。
キレート剤としては、例えば、特開平９－７５０９９号公報及び特開２００３－２７９４８９号公報等に記載の公知のキレート剤等が使用できる。
これらの内、化学発光増強効果及び保存安定性等の観点から、４配位キレート剤が好ましく、更に好ましいのはエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）及びその塩（エチレンジアミン四酢酸二ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸三ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸四ナトリウム、エチレンジアミン四酢酸二カリウム及びエチレンジアミン四酢酸三カリウム等）並びにトランス－１，２ジアミノシクロヘキサン－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－四酢酸（ＣｙＤＴＡ）、特に好ましいのはエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）及びその塩である。
キレート剤を含有する場合、その含有量は化学発光増強効果及び保存安定性の観点から、２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物の重量に基づいて、０．００１～４重量％が好ましく、更に好ましくは０．０１～２重量％、特に好ましくは０．０５～１重量％である。
化学発光試薬第１液は、液体であることが好ましく、また、酵素の蛍光強度の観点からはアルカリ性であることが好ましい。第１液のｐＨは、７～１１が好ましく、更に好ましくは８～１０である。尚、ｐＨは、ＪＩＳ　Ｋ０４００－１２－１０：２０００に準拠して測定される（測定温度２５℃）。
化学発光試薬第１液は、２，３－ジヒドロ－１，４－フタラジンジオン化合物、化学発光増強剤並びに必要により緩衝液及び／又はキレート剤を均一混合することにより容易に得ることができる。
化学発光試薬第２液が含有する酸化剤としては、例えば、特開平８－２６１９４３号公報及び特開２０００－２７９１９６号公報等に記載の公知の酸化剤等［無機の過酸化物（過酸化水素、過ホウ酸ナトリウム及び過ホウ酸カリウム等）、有機過酸化物（過酸化ジアルキル及び過酸化アシル等）、ペルオクソ酸化合物（ペルオクソ硫酸及びペルオクソリン酸等）等］の水溶液が挙げられる。
これらの内、保存安定性等の観点から、過酸化水素水溶液、過ホウ酸ナトリウム水溶液及び過ホウ酸カリウム水溶液が好ましく、更に好ましいのは過酸化水素水溶液である。
化学発光試薬第２液における酸化剤の濃度は、その種類及び適用する測定方法や測定条件等によって適宜設定されるが、化学発光増強効果等の観点から、０．５～４０ｍＭが好ましく、更に好ましくは１～２０ｍＭ、特に好ましくは２．５～１０ｍＭである。
化学発光試薬第２液が含有する水としては、蒸留水、逆浸透水及び脱イオン水等が挙げられる。これらの内、化学発光増強効果及び保存安定性等の観点から、蒸留水及び脱イオン水が好ましく、更に好ましいのは脱イオン水である。
化学発光試薬第２液は、酸化剤及び水以外にキレート剤等を含むことができる。
キレート剤としては、上述の第１液に含むことができるキレート剤として例示したものと同様のものが挙げられ、好ましいものも同様である。
キレート剤を含有する場合、その含有量は、化学発光増強効果及び保存安定性の観点から、酸化剤の重量に基づいて、０．２～１００重量％が好ましく、更に好ましくは０．５～２０重量％、特に好ましくは１～１０重量％である。
化学発光試薬第２液は、酸化剤、水及び必要によりキレート剤を均一混合することにより容易に得られる。
以下、実施例により本発明を更に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。以下、特に定めない限り、％は重量％、部は重量部を示す。
製造例１
反応容器に塩化鉄（ＩＩＩ）６水和物２．７部、塩化鉄（ＩＩ）４水和物１．０部及び水３７５部を仕込んで溶解させて５０℃に昇温し、攪拌下温度を５０～５５℃に保持しながら、２５％アンモニア水３．８部と水１００部を混合した溶液を１時間かけて滴下し、滴下後１時間攪拌し、オレイン酸１０．５部加え、２時間攪拌を継続した。室温に冷却後、デカンテーションにより固液分離して得られたオレイン酸が吸着したマグネタイト粒子を水５０部で洗浄する操作を３回行った。得られたオレイン酸が吸着したマグネタイト粒子を容器に仕込み、デカン５．７部及びテトラエトキシシラン２．２部を加えて混合し、分散液（Ａ２－１）を調製した。
反応容器に２５％アンモニア水溶液３９．０部、イソプロパノール５５．４部、ソルビタンモノオレエート２．９部（三洋化成工業社製「イオネットＳ－８０」）及びポリオキシエチレン（付加モル数２０モル）アルキル（Ｃ１６～１８）エーテル（三洋化成工業社製「エマルミン２００」）２．０部を加えてクリアミックス（エムテクニック社製）を用いて混合し、５０℃に昇温後、クリアミックスの回転数６，０００ｒｐｍで攪拌しながら、上記分散液（Ａ２－１）を１時間かけて滴下後、５０℃で１時間反応させた。反応後、２，０００ｒｐｍで５分間遠心分離して微粒子の存在する上清を除いた。得られた固相に水５０部を加えて粒子を分散させて１，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離後、微粒子の存在する上清を除く操作を１０回行った。続いて、得られた固相に水５０部を加えて粒子を分散させて５００ｒｐｍで５分間遠心分離することにより、大きな粒子径の粒子を沈降させて目的とする粒子径を有する粒子を含有する上清（１）を回収した。残った固相に水５０部を加えて５００ｒｐｍで５分間遠心分離後、上清（２）を回収する操作を２回行い、固相中に存在する目的とする粒子径を有する粒子を回収した。次に、上清（１）及び（２）について、磁石を用いて粒子を集磁し、集磁された粒子を８０℃で８時間乾燥させて磁性シリカ粒子（Ｓ１）を得た。
製造例２
乳化の際のクリアミックスの回転数を６，０００ｒｐｍから７，５００ｒｐｍに代えた以外は、製造例１と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ２）を得た。
製造例３
テトラエトキシシランの仕込量を２．２部から０．５部に代えた以外は、製造例１と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ３）を得た。
製造例４
乳化の際のクリアミックスの回転数を６，０００ｒｐｍから７，５００ｒｐｍに代えた以外は、製造例３と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ４）を得た。
製造例５
マグネタイト粒子作製時における２５％アンモニア水３．８部と混合する水の量を１００部から３３．８部に代えた以外は、製造例１と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ５）を得た。
製造例６
乳化の際のクリアミックスの回転数を６，０００ｒｐｍから７，５００ｒｐｍに代えた以外は、製造例５と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ６）を得た。
製造例７
テトラエトキシシランの仕込量を２．２部から０．５部に代えた以外は、製造例５と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ７）を得た。
製造例８
乳化の際のクリアミックスの回転数を６，０００ｒｐｍから７，５００ｒｐｍに代えた以外は、製造例７と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ８）を得た。
製造例９
マグネタイト粒子作製時における２５％アンモニア水３．８部と混合する水の量を１００部から５５部に代え、テトラエトキシシランの仕込量を２．２部から１．２部に代えた以外は、製造例２と同様にして磁性シリカ粒子（Ｓ９）を得た。
比較製造例１
テトラエトキシシランの仕込量を０．５部から８．０部に代えた以外は、製造例４と同様にして磁性シリカ粒子（Ｈ１）を得た。
比較製造例２
テトラエトキシシランの仕込量を１．２部から１２．５部に代えた以外は、製造例９と同様にして磁性シリカ粒子（Ｈ２）を得た。
比較製造例３
テトラエトキシシランの仕込量を１．２部から８．０部に代え、乳化の際のクリアミックスの回転数を７，５００ｒｐｍから６，０００ｒｐｍに代えた以外は、製造例９と同様にして磁性シリカ粒子（Ｈ３）を得た。
比較製造例４
１００部の硫酸第一鉄を１，０００部の水に溶解し、攪拌下、水５００部に水酸化ナトリウム２８．８部を溶解した水溶液を１時間かけて滴下後、攪拌しながら、８５℃まで昇温して空気を懸濁液に吹き込み８時間酸化し、遠心分離することにより得られたマグネタイト粒子２．２部をデカン５．７部及びテトラエトキシシラン２．２部と混合して分散液（Ｒ－１）を得た。分散液（Ａ２－１）を分散液（Ｒ－１）に代えた以外は、製造例２と同様にして磁性シリカ粒子（Ｈ４）を得た。
比較製造例５
テトラエトキシシランの仕込量を２．２部から１２．５部に代えた以外は、比較製造例４と同様にして磁性シリカ粒子（Ｈ５）を得た。
比較製造例６
平均粒子径５０ｎｍのマグネタイト粒子（シグマ　アルドリッチ　ジャパン社製)２．２部をデカン５．７部及びテトラエトキシシラン２．２部と混合して分散液（Ｒ－２）を得た。分散液（Ａ２－１）を分散液（Ｒ－２）に代える以外は、製造例１と同様にして磁性シリカ粒子（Ｈ６）を得た。
実施例１
以下の操作により、磁性シリカ粒子を含有する試薬（抗ＡＦＰ抗体結合磁性シリカ粒子試薬）、標識試薬（ＰＯＤ標識抗ＡＦＰ抗体試薬）、化学発光試薬第１液及び化学発光試薬第２液から構成される本発明の試薬を得た。
磁性シリカ粒子を含有する試薬の作製：
１重量％γ－アミノプロピルトリエトキシシラン含有アセトン溶液４０ｍＬの入った蓋付きポリエチレン瓶に製造例１で作製した磁性シリカ粒子（Ｓ１）４０ｍｇを加え、２５℃で１時間反応させ、ネオジウム磁石で磁性シリカ粒子を集磁後、液をアスピレーターで吸引除去した。次いで脱イオン水４０ｍＬを加えて蓋をし、ポリスチレン瓶をゆっくりと２回倒置攪拌した後、ネオジウム磁石で磁性シリカ粒子を集磁後、液をアスピレーターで吸引除去して磁性シリカ粒子を洗浄した。この洗浄操作を３回行った。次いで、この洗浄後の磁性シリカ粒子を２重量％グルタルアルデヒド含有水溶液４０ｍＬの入った蓋付きポリエチレン瓶に加え、２５℃で１時間反応させた。そして、脱イオン水４０ｍＬを加えて蓋をし、ポリスチレン瓶をゆっくりと２回倒置攪拌したのち、ネオジウム磁石で磁性シリカ粒子を集磁後、液をアスピレーターで吸引除去して磁性シリカ粒子を洗浄した。この洗浄操作を３回行った。更にこの洗浄後の磁性シリカ粒子を抗ＡＦＰモノクローナル抗体（ダコジャパン社より購入）を２０μｇ／ｍＬの濃度で含む０．０２Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ８．７）４０ｍＬの入った蓋付きポリエチレン瓶に加え、２５℃で１時間反応させた。反応後、ネオジウム磁石で磁性シリカ粒子を集磁後、抗ＡＦＰ抗体含有リン酸緩衝液を除去し、抗ＡＦＰ抗体結合磁性シリカ粒子を作製した。これを１％の牛血清アルブミン含有の０．０２Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で、抗ＡＦＰ抗体結合磁性シリカ粒子濃度として０．５ｍｇ／ｍＬの濃度に希釈し、磁性シリカ粒子を含有する試薬を調製し、冷蔵（２～１０℃）で保存した。
標識試薬の作製：
抗ＡＦＰポリクローナル抗体（ダコジャパン社より購入）、西洋ワサビ由来ＰＯＤ（東洋紡社製）を用い、文献（エス・ヨシタケ、エム・イマガワ、イー・イシカワ、エトール；ジェイ．バイオケム，Ｖｏｌ．９２，１９８２，１４１３－１４２４）に記載の方法でＰＯＤ標識抗ＡＦＰ抗体を調製した。これを１％の牛血清アルブミン含有の０．０２Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）で、ＰＯＤ標識抗ＡＦＰ抗体濃度として２００ｎＭの濃度に希釈し、標識試薬を調製し、冷蔵（２～１０℃）で保存した。
化学発光試薬第１液の調製：
ルミノールのナトリウム塩［シグマ　アルドリッチ　ジャパン社製］０．７ｇ及び４－（シアノメチルチオ）フェノール０．１ｇを１，０００ｍＬメスフラスコに仕込んだ。３－［４－（２－ヒドロキシエチル）－１－ピペラジニル］プロパンスルホン酸／水酸化ナトリウム緩衝液（１０ｍＭ、ｐＨ８．６）を溶液の容量が１，０００ｍＬになるように仕込み、２５℃で均一混合して化学発光試薬第１液を調製した。測定に用いるまで冷蔵（２～１０℃）保存した。
化学発光試薬第２液の調製：
過酸化水素［和光純薬工業社製、試薬特級、濃度３０重量％］６．６ｇを１，０００ｍＬメスフラスコに仕込んだ。脱イオン水を溶液の容量が１，０００ｍＬになるように仕込み、２５℃で均一混合して化学発光試薬第２液を調製した。測定に用いるまで冷蔵（２～１０℃）保存した。
実施例２～９及び比較例１～６
磁性シリカ粒子（Ｓ１）を磁性シリカ粒子（Ｓ２）～（Ｓ９）又は（Ｈ１）～（Ｈ６）に代える以外は実施例１と同様にして、本発明の又は比較用の磁性シリカ粒子を含有する試薬、標識試薬、化学発光試薬第１液及び化学発光試薬第２液から構成される本発明の試薬を得た。
得られた試薬を用いて、以下の方法により短時間での免疫測定における洗浄性及び感度を評価した結果を表１に示す。また、使用した磁性シリカ粒子（Ｓ１）～（Ｓ９）及び（Ｈ１）～（Ｈ６）について、以下に示す方法で超常磁性金属酸化物の平均粒子径、磁性シリカ粒子の平均粒子径、超常磁性金属酸化物の含有量を測定し、集磁性、再分散性及び再凝集性を評価した結果を併せて表１に示す。
＜本発明の試薬を用いた短時間での免疫測定における洗浄性及び感度の評価方法＞
磁性シリカ粒子を含有する試薬０．０２５ｍＬと１重量％の牛血清アルブミンを含有したリン酸緩衝液で調製したＡＦＰ濃度が２ｎｇ／ｍＬの標準ＡＦＰ液０．０２５ｍＬを試験管に入れて混合し、試験管中で３７℃で３分間反応させ、抗ＡＦＰ抗体結合磁性シリカ粒子／ＡＦＰ複合体を形成させた。反応後、試験管の外側からネオジウム磁石で磁性シリカ粒子を１０秒間集め、試験管中の液をアスピレーターで除き、ネオジウム磁石を側面から十分に離し、生理食塩水０．５ｍＬを加えて磁性シリカ粒子を分散させて集磁後、アスピレーターで液を除く洗浄操作を３回行った。
続いて、標識試薬０．０２５ｍＬを試験管に注入し、試験管中で３７℃で３分間反応させ、抗ＡＦＰ抗体結合磁性シリカ粒子／ＡＦＰ／ＰＯＤ標識抗ＡＦＰ抗体複合体を形成させた。反応後、試験管の外側からネオジウム磁石で磁性シリカ粒子を１０秒間集め、試験管中の液をアスピレーターで除き、ネオジウム磁石を側面から十分に離し、生理食塩水０．５ｍＬを加えて磁性シリカ粒子を分散させて集磁後、アスピレーターで液を除く洗浄操作を２回行った。
最後に、化学発光試薬第１液０．０７ｍＬと化学発光試薬第２液０．０７ｍＬとを同時に加え、３７℃で４３秒間発光反応させ、化学発光試薬を添加後４３～４５秒の平均発光量を発光検出器［Ｌｕｍａｔ　ＬＢ９５０７（ベルトールドジャパン社製）］で測定した。尚、ＡＦＰ濃度が２ｎｇ／ｍＬの標準ＡＦＰ液の代わりにＡＦＰ濃度が０ｎｇ／ｍＬの標準ＡＦＰ液を使用して上記と同様の操作を行いバックグラウンドとして用いた。
洗浄性については、ＡＦＰ濃度が０ｎｇ／ｍＬの標準溶液を用いて免疫測定を行った場合の平均発光量から以下の基準で判定した。
○：１０，０００ｃｐｓ未満
△：１０，０００ｃｐｓ以上かつ３０，０００ｃｐｓ未満
×：３０，０００ｃｐｓ以上
感度については、ＡＦＰ濃度が０ｎｇ／ｍＬと２ｎｇ／ｍＬの標準溶液を用いた免疫測定を行った場合の発光量の差から以下の基準で判定した。
○：２５，０００ｃｐｓ以上
△：１０，０００ｃｐｓ以上かつ２５，０００ｃｐｓ未満
×：１０，０００ｃｐｓ未満
＜超常磁性金属酸化物の平均粒子径の測定方法＞
任意の２００個の超常磁性金属酸化物について、走査型電子顕微鏡で観察して粒子径を測定し、その平均値を平均粒子径とした。
＜磁性シリカ粒子の平均粒子径の測定方法＞
任意の２００個の磁性シリカ粒子について、走査型電子顕微鏡で観察して粒子径を測定し、その平均値を平均粒子径とした。
＜磁性シリカ粒子中の超常磁性金属酸化物の含有量の測定方法＞
任意の２０個の磁性シリカ粒子について、走査型電子顕微鏡で観察し、エネルギー分散型Ｘ線分光装置により超常磁性金属酸化物の含有量を測定してその平均値を含有量とした。
＜磁性シリカ粒子の集磁性の評価方法＞
１．０ｍｇの磁性粒子シリカ粒子を２ｍＬのイオン交換水に分散させ、口内径×胴径×全高＝φ１０．３ｍｍ×φ１２．０ｍｍ×３５ｍｍのガラス容器に入れ、１ｃｍ×１ｃｍ×１ｃｍのネオジウム磁石を側面につけ、初期吸光度が２０％となるまでの時間を測定し、以下の基準で判定した。
○：１５秒未満
△：１５秒以上かつ３０秒未満
×：３０秒以上
＜磁性シリカ粒子の再分散性の評価方法＞
１．０ｍｇの磁性粒子シリカ粒子を２ｍＬのイオン交換水に分散させ、口内径×胴径×全高＝φ１０．３ｍｍ×φ１２．０ｍｍ×３５ｍｍのガラス容器に入れ、１ｃｍ×１ｃｍ×１ｃｍのネオジウム磁石を側面につけて、磁性シリカ粒子を完全に集磁し、上清を除去し、ネオジウム磁石を側面から十分に離し、２ｍＬのイオン交換水を磁性シリカ粒子に噴きつけながら加え、３回のピペッティングにより混合した後、１０秒以内に顕微鏡で観察し、視野内の全粒子数に対する凝集した粒子数の割合を算出して以下の基準で再分散性を判定した。
○：凝集粒子が５％未満
△：凝集粒子が５％以上かつ２０％未満
×：凝集粒子が２０％以上
＜磁性シリカ粒子の再凝集性の評価方法＞
３回のピペッティングによる混合後、顕微鏡で観察するまでの時間を１０秒以内から５分に代える以外は上記再分散性の評価方法と同様にして、視野内の全粒子数に対する凝集した粒子数の割合を算出して以下の基準で判定した。
○：凝集粒子が５％未満
△：凝集粒子が５％以上かつ２０％未満
×：凝集粒子が２０％以上
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
本発明の磁性シリカ粒子を用いた測定対象物質測定方法は、磁性シリカ粒子の磁気特性及び集磁後の粒子の再分散性が優れることから、簡便且つ短時間に高感度で測定対象物質を測定することができるため、放射免疫測定法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法及び化学発光免疫測定法等の臨床検査に幅広く適用できる。また、本発明の試薬は、上記測定方法に用いるのに適したものであり、同様に、放射免疫測定法、酵素免疫測定法、蛍光免疫測定法及び化学発光免疫測定法等の臨床検査薬として用いることができる。
　
　

Claims (18)

  1. 平均粒子径が１～１５ｎｍの超常磁性金属酸化物を６０～９５重量％含有するシリカ粒子の表面に、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化された磁性シリカ粒子を用いて試料中の測定対象物質を測定することを特徴とする測定対象物質測定方法。
  2. 前記磁性シリカ粒子が、測定対象物質と特異的に結合する物質（測定対象物質結合物質）をその表面に固定化しているものであって、前記測定対象物質を含む試料と、前記磁性シリカ粒子と、標識物質により標識された測定対象物質結合物質（標識測定対象物質結合物質）とを接触させて、前記磁性シリカ粒子上に前記測定対象物質結合物質と前記測定対象物質と前記標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）を形成させ、前記標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、前記標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて前記試料中の測定対象物質を測定する、請求項１記載の測定方法。
  3. 前記磁性シリカ粒子が、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質をその表面に固定化しているものであって、前記測定対象物質を含む試料と、標識物質により標識された測定対象物質と特異的に結合する物質（標識測定対象物質結合物質）と、前記磁性シリカ粒子とを接触させて、前記磁性シリカ粒子上に前記測定対象物質又は測定対象物質の類似物質と前記標識測定対象物質結合物質との複合体（標識複合体）を形成させ、前記標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、前記標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定する、請求項１記載の測定方法。
  4. 前記磁性シリカ粒子が、測定対象物質と特異的に結合する物質（測定対象物質結合物質）をその表面に固定化しているものであって、前記測定対象物質を含む試料と、標識物質により標識された測定対象物質又は測定対象物質の類似物質（標識測定対象物質又はその類似物質）と前記磁性シリカ粒子とを接触させて、前記磁性シリカ粒子上に前記測定対象物質結合物質と前記標識測定対象物質又はその類似物質との複合体（標識複合体）を形成させ、前記標識複合体を担持した磁性シリカ粒子をＢ／Ｆ分離して、前記標識複合体中の標識物質量を測定し、その結果に基づいて試料中の測定対象物質を測定する、請求項１記載の測定方法。
  5. 前記Ｂ／Ｆ分離が、磁性シリカ粒子の磁性を利用してなされるものである、請求項２～４の何れか記載の測定方法。
  6. 前記磁性シリカ粒子の平均粒子径が１～５μｍである、請求項１～５の何れか記載の測定方法。
  7. 前記超常磁性金属酸化物が酸化鉄である請求項１～６の何れか記載の測定方法。
  8. 前記酸化鉄がマグネタイト、γ－ヘマタイト、マグネタイト－α－ヘマタイト中間酸化鉄及びγ－ヘマタイト－α－ヘマタイト中間酸化鉄からなる群から選ばれる少なくとも１種の酸化鉄である請求項７記載の測定方法。
  9. 前記測定対象物質、前記測定対象物質の類似物質、又は、前記測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化される前の前記磁性シリカ粒子の表面にグルタルアルデヒド、アルブミン、カルボジイミド、ストレプトアビジン、ビオチン及び官能基を有するアルキルアルコキシシランからなる群から選ばれる少なくとも１種の有機化合物を結合させてなる、請求項１～８の何れか記載の測定方法。
  10. 前記アルキルアルコキシシランが有する官能基が、アミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基及びグリシジルオキシ基からなる群から選ばれる少なくとも１種の官能基である、請求項９記載の測定方法。
  11. 前記測定対象物質と特異的に結合する物質が、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質に対する抗体、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質が結合する抗原、或いは、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質に結合するタンパク質である、請求項１～１０の何れか記載の測定方法。
  12. 平均粒子径が１～１５ｎｍの超常磁性金属酸化物を６０～９５重量％含有するシリカ粒子の表面に、測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化された磁性シリカ粒子を含有することを特徴とする、請求項１～１１の何れか記載の測定方法用試薬。
  13. 前記磁性シリカ粒子の平均粒子径が１～５μｍである請求項１２記載の試薬。
  14. 前記超常磁性金属酸化物が酸化鉄である請求項１２又は１３記載の試薬。
  15. 前記酸化鉄がマグネタイト、γ－ヘマタイト、マグネタイト－α－ヘマタイト中間酸化鉄及びγ－ヘマタイト－α－ヘマタイト中間酸化鉄からなる群から選ばれる少なくとも１種の酸化鉄である請求項１４記載の試薬。
  16. 測定対象物質、測定対象物質の類似物質、又は、測定対象物質と特異的に結合する物質が固定化される前の前記磁性シリカ粒子の表面にグルタルアルデヒド、アルブミン、カルボジイミド、ストレプトアビジン、ビオチン及び官能基を有するアルキルアルコキシシランからなる群から選ばれる少なくとも１種の有機化合物を結合させてなる請求項１２～１５の何れか記載の試薬。
  17. 前記アルキルアルコキシシランが有する官能基が、アミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基及びグリシジルオキシ基からなる群から選ばれる少なくとも１種の官能基である請求項１６記載の試薬。
  18. 前記測定対象物質と特異的に結合する物質が、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質に対する抗体、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質が結合する抗原、或いは、測定対象物質又は測定対象物質の類似物質に結合するタンパク質である請求項１２～１７の何れか記載の試薬。
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KR1020137032450A KR101614196B1 (ko) 2011-06-15 2012-05-31 자성 실리카 입자를 사용한 측정 방법 및 그 측정 방법용 시약
CN201280028852.0A CN103597353B (zh) 2011-06-15 2012-05-31 使用磁性二氧化硅颗粒的测定方法和该测定方法用试剂
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Cited By (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2013205263A (ja) * 2012-03-29 2013-10-07 Sanyo Chem Ind Ltd 磁性シリカ粒子並びにこれを用いた免疫測定法及び免疫測定用試薬
JP2014210680A (ja) * 2013-04-18 2014-11-13 三洋化成工業株式会社 磁性粒子及びその製造方法
JP2015230293A (ja) * 2014-06-06 2015-12-21 古河電気工業株式会社 生体分子検出用試験キット、及びこれを用いた生体分子の検出方法、並びにこれらに用いられる生体分子検出用試験片及び生体分子検出用標識試薬
CN105403693A (zh) * 2015-10-27 2016-03-16 北京九强生物技术股份有限公司 一种磁微粒化学发光试剂的制备方法
JP2016090570A (ja) * 2014-11-04 2016-05-23 三洋化成工業株式会社 磁性シリカ粒子を用いた対象物質の分離方法
JP2016105066A (ja) * 2014-12-01 2016-06-09 三洋化成工業株式会社 磁性シリカ粒子、該磁性シリカ粒子を用いた測定対象物質測定方法及び測定対象物質測定用試薬
JP2018151384A (ja) * 2017-03-13 2018-09-27 三洋化成工業株式会社 免疫測定用試薬、免疫測定用キット及び免疫測定方法
WO2019132045A1 (ja) 2017-12-28 2019-07-04 積水化学工業株式会社 金属錯体粒子及びそれを用いた免疫測定用試薬
WO2019181830A1 (ja) 2018-03-19 2019-09-26 富士フイルム和光純薬株式会社 精神疾患の判定方法
WO2020004244A1 (ja) 2018-06-26 2020-01-02 富士フイルム和光純薬株式会社 膵臓癌の判定用マーカー
CN111721799A (zh) * 2020-07-22 2020-09-29 西南石油大学 一种通过黏土矿物催化稠油裂解成焦装置及方法
WO2021065105A1 (ja) * 2019-09-30 2021-04-08 富士フイルム株式会社 イムノクロマトグラフィー
WO2021070934A1 (ja) 2019-10-11 2021-04-15 国立研究開発法人産業技術総合研究所 がんの検査方法
WO2021095824A1 (ja) 2019-11-15 2021-05-20 富士フイルム和光純薬株式会社 大腸癌の診断を補助する方法、キット及びバイオマーカー
WO2021152966A1 (ja) * 2020-01-31 2021-08-05 富士フイルム株式会社 イムノクロマトグラフィー
WO2022220288A1 (ja) 2021-04-16 2022-10-20 富士フイルム株式会社 組成物、安定化方法、および、発光量を測定する方法、ならびに、発光基質用安定化剤
WO2023229024A1 (ja) 2022-05-27 2023-11-30 富士フイルム株式会社 血液腫瘍の診断を補助する方法、血液腫瘍の診断を行うためのデータを得る方法、及びこれらの方法のためのキット
WO2025070748A1 (ja) 2023-09-29 2025-04-03 富士フイルム株式会社 化学発光反応用エンハンサー試薬、および化合物
US12618842B2 (en) 2019-10-11 2026-05-05 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Cancer test method

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR101864375B1 (ko) * 2016-04-14 2018-07-13 고려대학교 세종산학협력단 바이오 실리카를 이용한 물질의 검출, 분리 또는 정제
CN107478844B (zh) * 2017-07-27 2019-04-23 江南大学 一种检测刀额新对虾特异性免疫球蛋白e方法
CN107643404B (zh) * 2017-09-04 2019-05-17 江南大学 一种检测中华绒螯蟹特异性免疫球蛋白e方法
CN108982835A (zh) * 2018-05-31 2018-12-11 湖南远璟生物技术有限公司 一种雌二醇磁微粒化学发光免疫定量检测试剂盒及其制备方法
WO2019240045A1 (ja) * 2018-06-14 2019-12-19 三洋化成工業株式会社 コアシェル粒子及びコアシェル粒子を用いた分離対象物質の分離精製方法
CN109085338B (zh) * 2018-09-13 2021-07-13 武汉伊莱瑞特生物科技股份有限公司 Ecl底物液及其制备方法和应用
CN111007248A (zh) * 2019-11-22 2020-04-14 迪瑞医疗科技股份有限公司 一种检测风疹病毒IgM抗体的化学发光免疫分析试剂盒
CN116559431B (zh) * 2022-01-28 2026-04-24 福州大学 一种基于高分子扩增信号放大的免疫分析方法

Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS59500252A (ja) 1982-03-03 1984-02-23 ブリティッシュ・テクノロジー・グループ・リミテッド 増強ルミネツセンスおよび発光分析
JPS59171839A (ja) 1983-02-11 1984-09-28 ナシヤナル、リサ−チ、デイヴエラツプマント、コ−パレイシヤン 増感ルミネセンス検定方法
JPH02291299A (ja) 1989-02-14 1990-12-03 Takeda Chem Ind Ltd 化学発光増強法
JPH03120467A (ja) * 1989-09-26 1991-05-22 W R Grace & Co 改善された固体アツセイ支持体系
JPH04168360A (ja) * 1990-10-31 1992-06-16 Sanyo Chem Ind Ltd 抗体の免疫測定法
JPH06130063A (ja) 1991-09-05 1994-05-13 Sanyo Chem Ind Ltd 免疫測定法及び免疫測定試薬
JPH08261943A (ja) 1995-03-27 1996-10-11 Sanyo Chem Ind Ltd 安定化された化学発光法、化学発光試薬およびそれらを用いた酵素免疫測定法
JPH0975099A (ja) 1995-09-12 1997-03-25 Sanyo Chem Ind Ltd 改良された化学発光試薬
JPH10319015A (ja) 1997-05-14 1998-12-04 Sanyo Chem Ind Ltd 安定化された化学発光試薬
JP2000040608A (ja) 1998-07-21 2000-02-08 Tosoh Corp 磁性シリカ粒子及びその製造方法
JP2000256388A (ja) 1999-03-10 2000-09-19 Jsr Corp 核酸結合用磁性シリカ粒子および核酸単離方法
JP2000279196A (ja) 1999-03-30 2000-10-10 Sanyo Chem Ind Ltd 化学発光法および化学発光試薬
JP2003279489A (ja) 2002-03-26 2003-10-02 Sanyo Chem Ind Ltd ペルオキシターゼ測定用化学発光試薬
JP2008116265A (ja) * 2006-11-01 2008-05-22 Bando Chem Ind Ltd 担体、担体の製造方法、およびその利用
JP2010032283A (ja) * 2008-07-28 2010-02-12 Fujifilm Corp 免疫学的測定方法

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4672040A (en) 1983-05-12 1987-06-09 Advanced Magnetics, Inc. Magnetic particles for use in separations
US4554088A (en) 1983-05-12 1985-11-19 Advanced Magnetics Inc. Magnetic particles for use in separations
US6562209B1 (en) 2001-04-19 2003-05-13 Northrop Grumman Corporation Automated computer controlled reporter device for conducting imunnoassay and molecular biology procedures
ES2208121B1 (es) 2002-11-29 2005-08-16 Consejo Sup. Investig. Cientificas Anticuerpos y antigenos inmovilizados sobre particulas magneticas de silice como biosensores.
ES2301296B1 (es) 2005-09-16 2009-05-29 Consejo Superior Investig. Cientificas Manoparticula biosensora, procedimiento de elaboracion y sus aplicaciones.
CN100441677C (zh) 2005-10-20 2008-12-10 上海师范大学 免疫磁性纳米粒子细菌分离器及其制法和应用
CN100449656C (zh) 2006-12-14 2009-01-07 复旦大学 一种三重核壳结构的磁性纳米粒子及其制备方法
CN101306841B (zh) 2007-05-16 2010-11-10 台湾圆点奈米技术开发有限公司 超顺磁性粒子及其制造方法
US7868145B2 (en) 2007-07-11 2011-01-11 Industrial Technology Research Institute Magnetic particles containing a copolymer core, magnetic layer and silicon layer
CN101256864B (zh) * 2008-01-07 2012-07-25 吉林大学 一种超顺磁性介孔二氧化硅复合球及其制备方法
KR101053023B1 (ko) 2008-02-14 2011-08-01 (주)바이오니아 구형 실리카 자성입자 및 이의 제조방법
CN101865919A (zh) 2010-04-29 2010-10-20 上海师范大学 一种快速检测筛选阪崎肠杆菌的方法

Patent Citations (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS59500252A (ja) 1982-03-03 1984-02-23 ブリティッシュ・テクノロジー・グループ・リミテッド 増強ルミネツセンスおよび発光分析
JPS59171839A (ja) 1983-02-11 1984-09-28 ナシヤナル、リサ−チ、デイヴエラツプマント、コ−パレイシヤン 増感ルミネセンス検定方法
JPH02291299A (ja) 1989-02-14 1990-12-03 Takeda Chem Ind Ltd 化学発光増強法
JPH03120467A (ja) * 1989-09-26 1991-05-22 W R Grace & Co 改善された固体アツセイ支持体系
JPH04168360A (ja) * 1990-10-31 1992-06-16 Sanyo Chem Ind Ltd 抗体の免疫測定法
JPH06130063A (ja) 1991-09-05 1994-05-13 Sanyo Chem Ind Ltd 免疫測定法及び免疫測定試薬
JPH08261943A (ja) 1995-03-27 1996-10-11 Sanyo Chem Ind Ltd 安定化された化学発光法、化学発光試薬およびそれらを用いた酵素免疫測定法
JPH0975099A (ja) 1995-09-12 1997-03-25 Sanyo Chem Ind Ltd 改良された化学発光試薬
JPH10319015A (ja) 1997-05-14 1998-12-04 Sanyo Chem Ind Ltd 安定化された化学発光試薬
JP2000040608A (ja) 1998-07-21 2000-02-08 Tosoh Corp 磁性シリカ粒子及びその製造方法
JP2000256388A (ja) 1999-03-10 2000-09-19 Jsr Corp 核酸結合用磁性シリカ粒子および核酸単離方法
JP2000279196A (ja) 1999-03-30 2000-10-10 Sanyo Chem Ind Ltd 化学発光法および化学発光試薬
JP2003279489A (ja) 2002-03-26 2003-10-02 Sanyo Chem Ind Ltd ペルオキシターゼ測定用化学発光試薬
JP2008116265A (ja) * 2006-11-01 2008-05-22 Bando Chem Ind Ltd 担体、担体の製造方法、およびその利用
JP2010032283A (ja) * 2008-07-28 2010-02-12 Fujifilm Corp 免疫学的測定方法

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Koso Meneki Sokutei-Ho", 1982, IGAKU-SHOIN LTD
"Koso Meneki Sokutei-Ho", 1982, IGAKU-SHOIN LTD.
AKIRA KAWAOI: "Zusetsu Keiko Kotai-Ho", 1983, I-NET CORP.
R. MASSART, IEEE TRANS. MAGN., vol. 17, 1981, pages 1247
S. YOSHITAKE; M. IMAGAWA; E. ISHIKAWA ET AL., J. BIOCHEM, vol. 92, 1982, pages 1413 - 1424
YUICHI YAMAMURA: "Ikagaku Jikken-Ho Koza", vol. 8, 1971, NAKAYAMA SHOTEN CO., LTD

Cited By (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2013205263A (ja) * 2012-03-29 2013-10-07 Sanyo Chem Ind Ltd 磁性シリカ粒子並びにこれを用いた免疫測定法及び免疫測定用試薬
JP2014210680A (ja) * 2013-04-18 2014-11-13 三洋化成工業株式会社 磁性粒子及びその製造方法
JP2015230293A (ja) * 2014-06-06 2015-12-21 古河電気工業株式会社 生体分子検出用試験キット、及びこれを用いた生体分子の検出方法、並びにこれらに用いられる生体分子検出用試験片及び生体分子検出用標識試薬
JP2016090570A (ja) * 2014-11-04 2016-05-23 三洋化成工業株式会社 磁性シリカ粒子を用いた対象物質の分離方法
JP2016105066A (ja) * 2014-12-01 2016-06-09 三洋化成工業株式会社 磁性シリカ粒子、該磁性シリカ粒子を用いた測定対象物質測定方法及び測定対象物質測定用試薬
CN105403693A (zh) * 2015-10-27 2016-03-16 北京九强生物技术股份有限公司 一种磁微粒化学发光试剂的制备方法
CN105403693B (zh) * 2015-10-27 2018-07-10 北京九强生物技术股份有限公司 一种磁微粒化学发光试剂的制备方法
JP2018151384A (ja) * 2017-03-13 2018-09-27 三洋化成工業株式会社 免疫測定用試薬、免疫測定用キット及び免疫測定方法
WO2019132045A1 (ja) 2017-12-28 2019-07-04 積水化学工業株式会社 金属錯体粒子及びそれを用いた免疫測定用試薬
WO2019181830A1 (ja) 2018-03-19 2019-09-26 富士フイルム和光純薬株式会社 精神疾患の判定方法
WO2020004244A1 (ja) 2018-06-26 2020-01-02 富士フイルム和光純薬株式会社 膵臓癌の判定用マーカー
WO2021065105A1 (ja) * 2019-09-30 2021-04-08 富士フイルム株式会社 イムノクロマトグラフィー
JP7148738B2 (ja) 2019-09-30 2022-10-05 富士フイルム株式会社 イムノクロマトグラフィー
JPWO2021065105A1 (ja) * 2019-09-30 2021-04-08
US12613240B2 (en) 2019-09-30 2026-04-28 Fujifilm Corporation Immunochromatography
WO2021070934A1 (ja) 2019-10-11 2021-04-15 国立研究開発法人産業技術総合研究所 がんの検査方法
US12618842B2 (en) 2019-10-11 2026-05-05 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Cancer test method
WO2021095824A1 (ja) 2019-11-15 2021-05-20 富士フイルム和光純薬株式会社 大腸癌の診断を補助する方法、キット及びバイオマーカー
JPWO2021152966A1 (ja) * 2020-01-31 2021-08-05
JP7257556B2 (ja) 2020-01-31 2023-04-13 富士フイルム株式会社 イムノクロマトグラフィー
WO2021152966A1 (ja) * 2020-01-31 2021-08-05 富士フイルム株式会社 イムノクロマトグラフィー
CN111721799A (zh) * 2020-07-22 2020-09-29 西南石油大学 一种通过黏土矿物催化稠油裂解成焦装置及方法
WO2022220288A1 (ja) 2021-04-16 2022-10-20 富士フイルム株式会社 組成物、安定化方法、および、発光量を測定する方法、ならびに、発光基質用安定化剤
WO2023229024A1 (ja) 2022-05-27 2023-11-30 富士フイルム株式会社 血液腫瘍の診断を補助する方法、血液腫瘍の診断を行うためのデータを得る方法、及びこれらの方法のためのキット
WO2025070748A1 (ja) 2023-09-29 2025-04-03 富士フイルム株式会社 化学発光反応用エンハンサー試薬、および化合物

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