PL148261B1 - Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes - Google Patents

Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes Download PDF

Info

Publication number
PL148261B1
PL148261B1 PL1981255773A PL25577381A PL148261B1 PL 148261 B1 PL148261 B1 PL 148261B1 PL 1981255773 A PL1981255773 A PL 1981255773A PL 25577381 A PL25577381 A PL 25577381A PL 148261 B1 PL148261 B1 PL 148261B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
lelf
oooooooo
gene
interferon
coli
Prior art date
Application number
PL1981255773A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=27496622&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL148261(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Priority claimed from US06/256,204 external-priority patent/US6610830B1/en
Application filed filed Critical
Publication of PL148261B1 publication Critical patent/PL148261B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/52Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • C07K14/555Interferons [IFN]
    • C07K14/56IFN-alpha
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/71Expression systems using regulatory sequences derived from the trp-operon
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania drobnoustrojów zdolnych do wytwarza¬ nia dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich, zawierajecego 165-166 aminokwasów lub w przypadku gdy metionina jest przyleczona do N-konca pierwszego aminokwasu tego interferonu, 166 - 167 aminokwasów oraz czesciowa sekwencje aminokwasowa Cys-Ala-Trp- Glu-Val-Val-Arg-Ala-Glu-Ile-Met-Arg-Ser, jak wskazano na fig. 4 lub fig. 9 w pozycji od 139 do 151.Interferon leukocytów ludzkich /LelF/ zostal po raz pierwszy odkryty i otrzymany w postaci surowych osadów przez Isaacs#a i Lindenmanna /Proc. R.Soc, B 147, 258 - 267 /1957/. Od tego czasu podjeto wysilki majace na celu oczyszczenie i scharakteryzowanie tego materialu, co doprowadzilo do otrzymania wzglednie Jednorodnych interferonów leukocytów ludzkich pochodzacych od zdrowych lub chorych na bialaczke dawców leukocytów /opia patentowy RFN nr DOS 2 947 134/. Interferony te tworza rodzine bialek znanych z tego, ze posiadaja, zdolnosc nadawania komórkom docelowym stanu opornosci na wirusy.Oprócz tego, interferon moze hamowac namnazanie sie komórek i wplywac na odpowiedz immunologiczne. Wlasciwosci te sklaniaje do klinicznego uzywania interferonu leukocytów jako srodka leczniczego do leczenia zakazen wirusowych i chorób nowotworowych.Interferony leukocytów oczyszczone do istotnej jednorodnosci /Rubinstein i inni.Proc. Natl. Acad. Sci.t USA, 76, 640 - 644 /1979/j Zoon i inni, lbod., 76, 5601 - 5603 /1979/, a ich ciezar czasteczkowy zawiera sie w granicach od okolo 17 500 do okolo 21 000. Aktywnosc wlasciwa tych preparatów Jest nadzwyczaj wysoka i wynosi 2 x 10 do 1 x 10 jednostek/mg bialka, ale ich wydajnosc z hodowli komórkowych jest zniechecajaco niska. Tym nie nniej, postepy w metodach ustalania sekwencji bialek pozwolily na usta¬ lenie czesciowej sekwencji aminokwasów /Zoon i wsp., Science, 207, 527 /1980/| Levy i wsp.# Proc* Natl. Acad. Sci., USA, 77, 5102 - 5104 /1980/. Wyjasnienie sprawy glikozy- lacji róznych interferonów leukocytów nie jest dotychczas calkowite, ale obecnie wiado¬ mo, ze róznice w glikozylacji wsród bialek tej rodziny nie wynikaja tylko ze spektrum zaobserwowanych ciezarów czesteczkowych. Natomiast interferony leukocytów róznie sie2 148 261 znacznie w skladzie amlnokwasowym 1 sekwencji, • homologia aminokwasów jest w niektórych przypadkach mniejsza niz 80%* Chociaz Izolowanie z leukocytów dawców zapewnilo dostateczna Ilosc materialu do c esciowej charakteryzacji i ograniczonych badan klinicznych hemogennego Interferonu leukocytów. Jest to zupelnie niewystarczajece zródlo interferonu w ilosciach niezbednych do badan klinicznych na wielka, skale, a nastepnie szerokiego stosowania zapo¬ biegawczego i/lub leczniczego* I rzeczywiscie, badacze kliniczni stosujecy obecnie w bada¬ niach aktywnosci przeciwnowotworowej i przeciwwirueowej Interferony otrzymane z ludzkich leukocytów byli ograniczeni do surowych /<1% czystosci/ preparatów tego materialu, a dlugi czas wytwarzania odpowiednich ilosci, nawet przy nierealistycznym poziomie cen, krytycznie opóznial badania na duze skale* Wraz z opracowaniem technologii rekombinantowego ONA, stalo sie Jednak mozliwe kontrolowane wytwarzanie wielu róznorodnych uzytecznych polipeptydów, przy uzyciu drobno¬ ustrojów* Obecnie dostepne se bakterie modyfikowane przy uzyciu tej technologii umozliwiaje- ce wytwarzanie produktów polipeptydowych, takich Jak somatostatyna,lancuch A i B Insuliny ludzkiej i ludzki hormon wzrostu /Itakura 1 inni. Science, 198. 1056 - 1063 /1977/, Goedel 1 .inni. Nature 281, 544 - 548 /1979/* Ostatnio uzyto technik rekombinantowego ONA w przypadku tworzenia przez bakterie prolnsuliny i tymozyny *& 1, a szereg autorów donioslo o otrzymaniu ONA kodujecego interferon leukocytów ludzkich 1 uzyskaniu bialek o aktywnosci interferonu leukocytów /Nagata i inni. Nature, 284, 316 - 320 /1980/, Mantei i inni, Gene, 10, 1-10 /1980/, Taniguchl 1 inni. Natura, 285, 547 - 549 /1980/* Jednak wszystkie te wymienione publikacje lecznie opisuje klonowanie plazmidu zawierajecego wstawke genetyczne, kodujece wytwarzanie Jedynie prekursorów interferonu leuko¬ cytów* W publikacji Nagata i wsp* opisano wyodrebnianie plazmidu E.coli, zawierajecego gen Interferonu leukocytów* Wskazano w niej, ze komórki E.coli transformowane tym plazmidem wytwarzaje w wyniku ekspresji pollpeptyd o aktywnosci biologicznej interferonu* Przyznano Jednak, ze powstajecy w wyniku ekspresji pollpeptyd moze nie byc dojrzalym interferonem leuko¬ cytów ludzkich, to Jest, ze pollpeptyd powstajecy w wyniku ekspresji moze zawierac presek- wencje nie wystepujece w postaci dojrzalego interferonu.W publikacji tej, na przelomie stron 319 i 320 stwierdzono: "Mozliwe Jest takze, ze E*coli IF sklada sie z sekwencji Le-IF poprzedzonej sekwencje sygnalowe, gdyz analiza sekwen¬ cji nukleotydowej klonowanego IF cONA ujawnila obszar kodujecy 22 aminokwasy, wystepujecy za pierwszym AUG 1 poprzedzajecy obszar kodujecy dojrzaly IF /M.Schwarzstein, N*Mantei i M*S*, wyniki niepublikowane1** Wspomniana publikacja Mantei i wsp* opisuje sekwencjonowanie nukleotydu genu leuko¬ cytu klonowanego przez Nagata i wsp* i potwierdza, ze obszar kodujecy genu rzeczywiscie za¬ wiera sekwencje, kodujece bialko sygnalowe* W podsumowaniu w publikacji tej stwierdzono: "Wstawka z 910 par zasad zawiera sekwencje kodujece z 567 /lub 543/ par zasad, okreslajece domniemany pollpeptyd preinterferonu skladajecy sie z bialka sygnalowego z 23 /lub mniej, mozliwe 15/ aminokwasów, po którym nastepuje polipeptyd interferonu zawierajecy 166 aminokwa¬ sów*.Y/e wspomnianej publikacji Taninguchi i wsp* porównano sekwencje z. DNA wytworzonego przez Taninguchi i wsp* /Gema 10 /1980/, str* 11-15/, kodujece interferon fibroblastów i otrzymane przez Mantei i wsp.f kodujece interferon leukocytów. Tak wiec wszystkie wymienione publikacje ujawniaje wytwarzanie drobnoustrojów zdolnych do wytwarzania prekursorów interfero¬ nu leukocytów. W przeciwienstwie do tych ujawnien, sposób wedlug wynalazku dotyczy wytwarza¬ nia drobnoustrojów zdolnych do wytwarzania interferonów leukocytów ludzkich o pelnej dlugosci, którym nie towarzyszy zadna ludzka presekwencja lub jej czesc, to jest dojrzalej postaci leukocytów ludzkich.Obecnie stwierdzono, ze zastosowanie technologii rekombinantowego DNA /to jest insercja genów interferonu do drobnoustrojowych nosników ekspresji i ich ekspresja pod kontro¬ le drobnoustrojowych elementów regulatorowych genów do wytwarzania drobnoustrojów zdolnych do wytwarzania dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich mogloby byc najskuteczniejsze droge zapewnienia duzych ilosci dojrzalego interferonu leukocytów, który pomimo braku w tak tworzo¬ nym naterlale gllkozylacjl charakterystycznej dla materialu poohodzecego od czlowieka, móglby148 261 3 byc zastosowany klinicznie do leczenia szeregu chorób wirusowych i nowotworowych• Sposób wytwarzania drobnoustrojów zdolnych do wytwarzania dojrzalego interfero¬ nu leukocytów ludzkich, zawierajecego 165-166 aminokwasów lub, w przypadku gdy metionina jest przyleczona do N-konca pierwszego aminokwasu tego interferonu, 166-167 aminokwasów oraz czesciowe sekwencje aminokwasowe Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Glu-Ile-Met-Arg-Ser, jak wskazano na fig .4 lub fig.9 w pozycji od 139 do 151, polegajacy na transformowaniu szczepu E.coli nosnikiem ekspresji i hodowli transformowanego szczepu, wedlug wynalazku charakteryzuje sie tym, ze konstruuje sie wektor E.coli zawierajecy promotor trp. E.coli, operator i liderowe miejsce przyleczanla rybosomów trp, izoluje sie gen kodujecy interferon leukocytów ludzkich ze zbioru kolonii bakteryjnych zawierajecych DNA komplementarny z indukowanym mRNA leukocytów ludzkich lub z indukowanym mRNA linii komórkowej bedz ludzki genomowy DNA, wycina sie przez ciecie restrykcyjne gen kodujecy Interferon leukocytów ludz¬ kich i dokonuje sie insercji tak wycietego genu z wyeliminowane jakekolwiek sekwencje lide¬ rowe mogece zapobiegac drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich za promotorem trp. E.coli, operatorem i liderowyra miejscem przyleczanla rybosomów trp, otrzymanym nosnikiem ekspresji E.coli, zdolnym do ekspresji w E.coli wspomnianego dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich transformuje sie w znany sposób szczap E.coli i prowadzi sie hodowle transformowanego organizmu.Otrzymywanie z leukocytów genu stosowanego w sposobie wedlug wynalazku obejmuje nastepujece etapy: 1/ Do skonstruowania próbek syntetycznego DNA, których kodony,w agregacie,repre¬ zentuje wszystkie mozliwe kombinacje nukleotydów zdolne do kodowania czesciowych sekwencji aminokwasów, stosuje sie czesciowe sekwencje aminokwasów interferonu leukocytów ludzkich, oczyszczone do stopnia jednorodnosci. 2/ Przygotowuje sie zbiór kolonii bakteryjnych zawierajecych DNA komplementarny /cDNA/ do indukowanego informacyjnego DNA. Inny indukowany mRNA, znaczony promieniotwórczo, hybrydyzuje sie z plazmidowym cDNA tego zbioru. Zhybrydyzowany mRNA eluuje sie i bada pod wzgledem translacji do interferonu w oocytach. Plazmidowy DNA z kolonii, wykazujecy w ten sposób indukcje aktywnosci interferonu, bada sie dalej przez hybrydyzacje z próbkami przy¬ gotowywanymi jak opisano wyzej w etapie 1/. 3/ Równolegle z przystepieniem do czynnosci w etapie 2/ otrzymany w plazmidach cDNA indukowany mRNA stosuje sie do tworzenia niezaleznego zbioru transformowanych kolonii.Próbki otrzymano w etapie 1/ stosuje sie do prymowania syntezy znaczonego promieniotwórczo jednoniciowego cDNA przeznaczonego do zastosowania w charakterze próbek do hybrydyzacji.Syntetyczne próbki zhybrydyzowane z indukowanym mRNA jako matryce wydluza sie za pomoce odwrotnej transkrypcji, tworzec indukowany, znaczony promieniotwórczo cDNA. Klony zbioru kolonii, które hybrydyzowaly z otrzymanym w ten sposób znaczonym promieniotwórczo cDNA, bada sie dalej w celu potwierdzenia obecnosci genu kodujecego interferon, o pelnej dlugosci.Kazdego z fragmentów genu otrzymanych w etapie 1/ lub 2/ o domniemanej czesciowej dlugosci mozna uzyc Jako próbki dla genu o pelnej dlugosci. 4/ Gen o pelnej dlugosci, otrzymany jak opisano wyzej, poddaje sie obróbce z uzyciem syntetycznego DNA aby wyeliminowac jakekolwiek sekwencje liderowe, która moglaby zapobiegac ekspresji drobnoustrojowej dojrzalego polipeptydu i aby umozliwic prawidlowe umiejscowienie w nosniku ekspresji drobnoustrojowego promotora w stosunku do sygnalów startu i miejsca przyleczenia rybosomów. Powstaly w wyniku ekspresji interferon oczyszcza sie do punktu pozwalajecego na potwierdzenie jego charakteru i oznaczenie aktywnosci. 5/ Fragment genu interferonu, przygotowany w powyzszy sposób,stosuje sie jako próbke do hybrydyzacji dla innych, czesciowo homologicznych rodzajów interferonu leukocytów.Czynnikiem glównie wykorzystywanym w technologii rekominantowego DNA jest plaz¬ mid, niechromosomalna petla dwuniciowego DNA znajdowana w bakteriach i innych drobnoustro¬ jach, czesto w wielu kopiach na komórke, w sklad informacji kodowanej przez plazmidowy DNA wchodzi informacja wymagana do replikacji plazmidu w komórkach potomnych /to jest "repli- kon"/ i zwykle jedna lub wiecej selekcyjnych cech charakterystycznych, takich jak w przypad-4 148 261 ku bakterii, opornosc na antybiotyki, co pozwala na rozpoznanie klonów komórek gospodarza zawierajecych plazmid,o którym mowa i na uprzywilejowany wzrost w wybiorczych podlozach.Uzytecznosc plazmidów polega na tym, ze moge byc one specyficznie rozszczepione przez take lub inne endonukleaze restrykcyjne, czyli "enzym restrykcyjny", z których kazdy rozpoznaje odmienne miejsce w plazmidowym DNA. Nastepnie mozna wprowadzic do plazmidu heterologiczne geny lub fragmenty bakteriologicznych genów przez leczenie konców w miejscu rozszczepienia, lub zrekonstruowanych konców przylegajecych do miejsca rozszczepienia. Rekombinacja DNA przeprowadzana jest po2a komórke, ale wynikajecy z niej "rekombinantowy" plazmid mozna wpro¬ wadzic do komórki sposobem znanym jako transformacja* Przez wzrost transformantu otrzymuje sie duze ilosc rekombinantowego plazmidu zawierajecego gen* Ponadto, jesli gen jest wprowa¬ dzony do plazmidu prawidlowo w odniesieniu do czesci decydujecych o transkrypcji i transla¬ cji kodowanej przez DNA informacji, mozna uzyc otrzymanego nosnika ekspresji do faktycznego tworzenia sekwencji polipeptydowej, które wprowadzony gen koduje, to jest procesu zwanego ekspresje* Ekspresja jest inicjowana w regionie znanym jako promotor, który jest rozpozna¬ wany przez przyleczenie polimerazy DNA, W niektórych przypadkach, jak w przypadku promotora stanowiacego tryptofan lub "trp", korzystnego w praktycznym zastosowaniu wynalazku, na regio¬ ny promotora zachodze regiony "operatora", tworzec kombinowany promotor-operator* Operatora¬ mi se sekwencjo DNA rozpoznawane przez tak zwane bialka represorowe, które sluze do regula¬ cji czestotliwosci inicjacji transkrypcji na poszczególnym promotorze* Polimeraza posuwa sie wzdluz DNA, dokonujec transkrypcji infornacjl zawartej w niciach kodujecych, od Ich konca 5#- do konca 3#-, do informacyjnego DNA, który z kolei ulega translacji do polipepty- du o sekwencji aminokwasów, które koduje ONA* Kazdy aminokwas jest kodowany przez tryplet nukleotydowy czyli "kodon", który noze celowo byloby nazywac "genem strukturalnym", to Jest w czesci kodujecej sekwencje aminokwasów produktu ekspresji* Po przyleczeniu do promotora, polimeraza DNA najpierw dokonuje transkrypcji nukleotydów kodujecych miejsca przylaczania rybosomu, a nastepnie sygnalu inicjacji transla¬ cji, czyli sygnalu "start" /zwykle ATG, który w powstajecym informacyjnym RNA staje sie AUG/, a pózniej kodonów nukleotydowych w samym genie strukturalnym. Tak zwane kodony stop ulegaje transkrypcji na koncu strukturalnego genu, po czym polimeraza moze tworzyc dodatkowe sekwen¬ cje mRNA, która z powodu obecnosci sygnalu etop nie ulegnie translacji na rybosomach. Rybo¬ somy lecze sie z miejscem przyleczenie, które zapewnie informacyjny RNA, w bakteriach tworzony zwykle jako mRNA, przez co dochodzi do tworzenia kodowanego polipeptydu, zaczynajec od sygnalu startu translacji, a konczec na uprzednio wspomnianym sygnale stop* Pozedany produkt tworzy sie jesli sekwencje kodujece miejsca przyleczenie rybosomów se umiejscowione prawi¬ dlowo w odniesieniu do kodonu inicjacji AUG i jesli wszystkie pozostale kodony nastepuje po kodonie inicjacji w fazie* Powstaly produkt mozna otrzymywac przez lize komórek gospodarza 1 odzyskiwanie produktu przez odpowiednie oczyszczenie od innych bialek bakteryjnych, W zastosowaniu metod technologii rekombinantowego DNA, jak to podano wyzej, osie- ga sie wytwarzanie przez drobnoustroje z wysoke wydajnoscie 1 czystoscie, rodziny homolo¬ gicznych Interferonów leukocytów /nie gllkozylowanych/ jako dojrzalych polipeptydów, którym zasadniczo nie towarzysze odpowiednie presekwencje lub jakiekolwiek ich czesci. Te interfe¬ rony moge ulegac bezposredniej ekspresji, odzyskaniu i oczyszczaniu do poziomu przystosowu- jecego je do uzycia w leczeniu chorób wirusowych i nowotworowych ludzi i zwierzat. Udowodniono, ze bialka z tej rodziny ulegajece w ten sposób ekspresji se skuteczne w badaniach in vitro i po raz pierwszy dla tego rodzaju bialek równiez in vivo, przy czym te ostatnie badania obejmuje pierwszy dojrzaly interferon leukocytów wytwarzany przez drobnoustroje* Termin "dojrzaly interferon leukocytów" w kontekscie niniejszego opisu definiuje czesteczke interferonu wytworzone przez drobnoustroje /np* bakterie/* pozbawione grup gliko- zylowych* Dojrzaly interferon leukocytów wedlug wynalazku ulega ekspresji bezposrednio od translacyjnego sygnalu startu /ATK/ dokladnie przed pierwszym kodonem aminokwasu naturalnego produktu* "Dojrzaly" polipeptyd moze wiec zawierac jako pierwszy aminokwas w sekwencji metionine /które koduje ATG/, bez zasadniczej zmiany charakteru polipeptydu* Z drugiej stro¬ ny, drobnoustrój - gospodarza moze przeksztalcac produkt translacji z usunieciem poczet- kowej metloniny* Dojrzaly interferon leukocytów moze ulegac ekspresji lecznie z przyleczo- nym bialkiem, innym niz zwykly lider, przy czym koniugat moze byc specyficznie rozszcze¬ pialny w srodowisku wewnetrz-lub zewnetrz-komórkowym /patrz brytyjski opis patentowy nr 2007676 A/.148 261 5 Wreszcie, dojrzaly Interferon moze byc tworzony w poleczeniu z drobnoustrojo¬ wym peptydem "sygnalowym", który transportuje konlugat do sciany komórkowej, gdzie peptyd sygnalowy ulega odszczepieniu, a dojrzaly polipeptyd wydzieleniu. "Ekspresja" dojrzalego interferonu leukocytów oznacza wytworzenie przez bakterie lub inne drobnoustroje czestecz- ki interferonu nie zawierajecej grup glikozylowych lub presekwencjif co bezposrednio towa¬ rzyszy translacji mRNA genomu interferonu leukocytów* Poszczególne leukocytowe bialka interferonowe se zdefiniowane przez okreslony DNA genu /figury 3 i 8/ i dedukcyjne sekwencje aminokwasów /figury 4 i S/. Nalezy rozumiec, ze w odniesieniu do tych poszczególnych interferonów, wlasciwie wszystkie z rodziny leukocy- towych bialek interferonowych, które mozna wytwarzac przy zastosowaniu drobnoustrojów wytwarzanych sposobem wedlug wynalazku, istnieje naturalne wariacje zalezne od alleli, poja- wiajece sie od osobnika do osobnika* Wariacje te,mozna wykazac przez róznice /róznice/ w calkowitej sekwencji lub przez delecje, podstawienia, insercje, inwersje lub dodanie amino¬ kwasu /aminokwasów/ we wspomnianej sekwencji* Dla kazdego z leukocytowych bialek interfero- nowych otrzymanych przy zastosowaniu drobnoustrojów wytwarzanych sposobem wedlug wynalazku, oznaczonych od LelF A do LelF D wspomniane wariacje zalezne od alleli objete se zakresem oznaczenia lub definiujecego je terminu i w ten sposób dotycze zakresu niniejszego wynalazku* Wynalazek jest blizej wyjasniony na rysunku, na którym fig.l przedstawia dwie sekwencje aminokwasów wspólne wszystkim rodzajom interferonu wyizolowanym z leukocytów ludz¬ kich i oczyszczonym do stopnia jednorodnosci, oznaczone T-l i T-13* Wszystkie potencjalne sekwencje mRNA kodujece te peptydy ukazano tak, jak i odpowiednie sekwencje DNA* Litery A, T, G, C i U oznaczaje odpowiednio nukleotydy zawierajece jako zasade adenine, tymine, guanine, cytozyne i uracyl* Litera N oznacza którykolwiek z nukleotydów A, G* C i U* Polinu- kleotydy se przedstawione jako odczytywane w kierunku od 5*/z lewej/ do 3*/z prawej/, a gdy przedstawiony jest dwuniciowy /"d*s*V DNA, w kierunku odwrotnym dla nizszej lub nie koduje- cej nici; fig* 2 przedstawia autoradiogram wykazujecy hybrydyzacje potencjalnego plazmidu LelF z syntetycznym dezoksyoligonukleotydem znaczonym 32Pj fig*3 przedstawia sekwencje nukleotydów /nic kodujeca/ osmiu fragmentów genowych izolowanych jako kandydujece do uzycia w ekspresji interferonów leukocytów, odpowiednio oznaczonych od "A" do "H"; inicjacyjny kodon translacji ATG i tryplet dla kazdego zakonczenia LelF jest podkreslony, po kodonach stop czyli trypletach zakonczenia nastepuje regiony 3#nie ulegajece translacji* Przedstawiono równiez gen LelF A o pelnej dlugosci, któremu brak jest jednego kodonu znajdowanego w innych przedstawionych genach, jak wskazano w trzeciej linii A na fig* 3* Nie ulegajece translacji regiony 5* poprzedzaje sekwencje liderowe* Po wyizolowaniu, we fragmencie E brak pelnej presekwencji lidera, ale zawiera on nie naruszony gen domniemanego dojrzalego LelF E* We fragmencie G po wyizolowaniu brak pelnej sekwencji kodujecej* Figura 4 przedstawia porównanie sekwencji osmiu bialek LelF przewidzianych na podstawie sekwencji nukleotydów. Uzyto jednoliterowych skrótów zalecanych przez IUPAC - IUB Commision on Biochemical Nomenclature: A - alanina, C - cysteina, D - kwas asparaginowy.E - kwas glutaminowy, F - fenyloalanina, G - glicyna, H - histydyna, I - izoleucyna, K - lizyna, L - leucyna, M - metionina, N - asparagina, P - prolina, Q - glutamina, R - arginina, S - seryne, T - treonina, V - walina, W - tryptofan i Y - tyrozyna* Numery odnosze sie do pozycji aminokwasów /S odnosi sie do peptydu sygnalowego/* Kreske w 165 aminokwasie sekwen¬ cji LelF A w pozycji 44 wprowadzono w celu ustawienia sekwencji LelF A w jednym szeregu z 166 - aminokwasowymi sekwencjami pozostalych LelF* Sekwencje LelF ustalono przy zingnorowa- niu nadprogramowego nukleotydu /pozycja 187 na fig*3/ w regionie kodujecym. Gwiazdka wskazu¬ je kodony zakonczenia w fazie* Przedstawiono równiez aminokwasy wspólne wszystkim LelF /z wyleczenlem pseudogenu LelF E/* Podkreslone reszty se resztami aminokwasów obecnymi rów¬ niez w interferonie fibroblastów ludzkich* Figura 5 przedstawia mapy restrykcyjne sklonowanych ONA osmiu typów LelF /A do H/* Hybrydowe plazmidy konstruowano metode leczenia konców dC : dG ^~D*V* Goeddel i inni.Nature, 287, 411 - 416 /198Q7» Tak wiec. Inserty cDNA mozna wyciec za pomoce Pstl* Linie na kazdym z konców insertów cDNA reprezentuje boczne homopolimeryczne zakonczenia dC : dG* Wskazano pozycje miejsc restrykcyjnych PvuII, EcoRI i Bglll* Obszary zacieniowane na rysun¬ ku przedstawiaje sekwencje kodujece dojrzalych LelF* Obszary zakreskowane skosnie przedsta-6 148 261 wiaje sekwencje kodujece peptydy sygnalowe, a obszary otwarte ukazuje nie kodujece sekwen¬ cje 3#i 5#.Figura 6 przedstawia schematycznie konstrukcje genu kodujecego bezposrednie synteze przez drobnoustroje dojrzalego LelF A* Wskazano miejsca restrykcyjne i reszty /•Pst I" itp/* Termin ¦b*p." oznacza "pary zasad".Figura 7 /nie w skali/ schematycznie przedstawia nape restrykcyjne dwóch frag¬ mentów genów zastosowanych do wywolywania ekspresji dojrzalego interferonu leukocytów LelF B.Wskazane sekwencje kodonów przedstawiaja zakonczenia nici kodujecej bedece rezultatem tra¬ wienia enzymem restrykcyjnym Sau3a w dwóch pokazanych przypadkach* • Figury 8 i 9 przedstawiaje sekwencje DNA i aminokwasów S bialek LelF wytwarza¬ nych sposobem wedlug wynalazku wlecznie z typami I i 3 /co do odpowiadajecych Jednolitero¬ wych skrótów, patrz fig*4/* Na fig.9 gwiazdka wskazuje kodon zakonczenia w odpowiadajecej mu sekwencji DNA, a lecznik delecje lub przerwe w sekwencji* Zastosowany drobnoustrój,korzystnie stosuje sie dwa drobnoustroje E.coli x 1776, jak opisano w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4 190 495 oraz E*coli K-12 szczep 294 /end A,thi", har", hsm^/, jak opisano w brytyjskim opisie patentowym nr 2 055 382 A* Kazdy z nich jest zdeponowany w American Type Culture Collection /numery rejestracyjne ATCC, odpowiednio, 31 537 i 31 446/* Cale prace zwiezane z rekombinantowym DNA prowadzi sie zgodnie ze stosowanymi wskazówkami National Institutes of Health* Wynalazek, w najkorzystniejszej postaci, opisano w odniesieniu do E.coli, w tym nie tylko szczepów E* coli x 1776 i E*coli K-12 6zczep 294, zdefiniowanych wyzej, ale i innych znanych szczepów E.coli, takich jak E. coli B lub innych szczepów drobnoustrojów, z których wiele jest zdeponowanych i dostepnych w znanych instytucjach deponujacych drobnoustroje, ta¬ kich jak American Type Culture Collection* Patrz równiez opublikowany opis zgloszenia paten¬ towego RFN nr DOS 2 644 432.Wynalazek jest blizej zilustrowany nastepujacymi przykladami* Przyklad I* Wytwarzanie szczepu E.coli zdolnego do wytwarzania dojrza- leon LelF A.A. zródlo i oczyszczanie mRNA LelF mRNA LelF mozna otrzymac z leukocytów ludzkich pochodzecych zwykle od pacjentów z przewlekle bialaczke szpikowe, indukowanych w celu wytworzenia interferonu wirusem Sendai lub choroby Newcastle, jak opisano np* w opublikowanym opisie zgloszenia patentowego RFN nr DOS 2947134. Szczególnie korzystnym zródlem, którego uzywa sie w sposobie wedlug wynalazku, jest linia komórkowa oznaczona Kg-1, otrzymana od pacjenta z ostre bialaczke szpikowe. Ta linia komórkowa, opisana przez H.P. Koefflara i D.M. Golde#a, Science, 200, 1153 /1978/, rosnie latwo w hodowli w podlozu hodowlanym zawierajecym RPMI /Rosewell Park Memorial Insti- tute/ 1640 x 10% FCS /plodowa surowica cieleca/ inaktywowane cieplem, 25 mM buforu HEPES /kwas N-2-hydroksyetylopiperazyno-N*-2-etanosulfonowy/ i 50 ^g/ml gentamycyny i jest przeszczepiana z podzialem na 1 - 3 czesci dwa razy na tydzien. Komórki mozna wymrozic z wymienionego poprzednio podloza wzrostowego + 10% dwumetylosulfotlenku. KG-1 zdeponowano w American Type Cukture Collection /nr rejestracyjny ATCC CRL 8031/.Komórki KG-1 indukuje sie w celu wytworzenia mRNA interferonu leukocytów wirusem Sendai lub wirusem choroby Newcastle metode opisane przez Rubinsteina i innych /Proc* Natl* Acad. Sci., USA, 76, 640-646 /1979/* Komórki zbiera sie po uplywie 5 godzin po indukcji i otrzymuje sie RNA metode: tiocyjanian guanidyny - chlorowodorek guanidyny /Chirgwin i wsp*, Biochemistry, 18, 5294 - 5299 /1979/* RNA z komórek nie indukowanych izoluje sie w ten sam sposób* do otrzymania frakcji 125 mRNA poli/A/ uzywa sie chromatografii na oligodezoksyty- midyno /dT/ -.celulozie i ultrawirowania w gradiencie sacharozy, jak opisali Green i inni /Aren. Blochem. Biophys*, 172, 74 - 89 /1979/ i Okuyuma i inni /Aren, Biochem. Biophys*, 188, 98 - 104 /1978/* Taki mRNA wykazuje miano interferonu 8000 - 10000 jednostek/ /jg w ba¬ daniu w oocytach Xenopus laevis /Cavalieri i inni. Proc* Natl* Acad, Sci* USA, 74, 3287 - 3291 /1977/* B. Przygotowanie zbiorów kolonii zawierajecych sekwencje LelF cDNA.Do otrzymania dwunicowego cDNA zwyklymi metodami /Wickens i inni, O.Biol* Chem., 253, 2483 - 2495 /1978/ i Goeddel i inni. Nature, 281, 544 - 548 /1979/ stosuje sie 5 yug mRNA.148 261 7 cDNA frakcjonuje sie pod wzgledem wielkosci za pomoce elektroforezy w 6% zelu poliakrylo- amidowym i za pomoce elektroelucji odzyskuje sie 230/jg materialu w zakresie 500 - 1500 b.p.Do konców tego cDNA,w 100 ^g próbce, wprowadza sie reszty dezoksycytydyny /dC/, Jak opisali Chang i inni, Nature, 275, 617 - 624 /1978/, leczy sie z 470 ng plazmidu pBR322, do konców którego wprowadzono reszty dezoksyguenozyny /dG/ w miejscu Pstl /Bolivar i inni, Gene, 2, 95 - 113 /1977/ i uzywa do transformowania E.coli x 1776. Otrzymuje sie okolo 130 transfor¬ mantów opornych na tetracykllne, wrazliwych na ampicyline, na ng cDNA.W drugim podobnym eksperymencie otrzymuje sie okolo 1000 transformantów E.coli K-12 szczep 294 opornych na tetracykline, wrazliwych na ampicyline, na ng cDNA. W tym przypad¬ ku po frakcjonowaniu pod wzgledem wielkosci odzyskuje sie za pomoce elektroelucji cDNA w zakresie 600 - 1300 b.p. w celu wprowadzenia reszt dC* C* Otrzymywanie i stosowanie syntetycznych dezoksynukleotydów* Znajomosc sekwencji aminokwasów kilku fragmentów trypsynowych Interferonu leuko¬ cytów ludzkich pozwala wyznaczyc syntetyczne dezoksynukleotydy komplementarne do róznych regionów mRNA LelF* Wybrano dwa peptydy trypsynowe Tl i T13, poniewaz ich sekwencja aminokwa¬ sów wymaga syntezy tylko, odpowiednio 12 1 4 undekamerów, odpowiadajecych wszystkim mozliwym sekwencjom kodujacym /fig.l/. Syntetyzuje sie 4 zestawy próbek dezoksynukleotydów, dla kazdej z sekwencji zawierajecych albo trzy /T1A, B, C, D/, albo Jeden /T-13 A, B, C, 0/ oligodezoksy- nukleotyd* Wskazane komplementarne dezoksynukleotydy o dlugosci 11 zasad syntetyzuje sie chemicznie metode fosfotriestrowa /Crea i inni, Proc* Natl* Acad* Sci* USA, 75, 5765 - 5769 /1978/.Otrzymuje sie cztery indywidualne próbki w serii T-13, a dwanascie próbek T-l w czterech pulach po trzy próbki, jak przedstawiono na fig.l* Przygotowuje sie cztery indywidualne próbki serii T-13 i dwanascie T-l w czte¬ rech pulach po trzy primery w kazdej 1 uzywa sie do prymowania syntezy znaczonego promienio¬ twórczo jednoniciowego cDNA, uzywanego jako próbki do hybrydyzacji. Matryce mRNA jest albo 12S RNA z komórek kG-1 Indukowanych wirusem Sendai /8000 jednostek aktywnosci IF//ug/t albo calkowity mRNA poli/A/ z nie indukowanych leukocytów /^10 jednostek/ y«jgA Z primerów tych, stosujec znane warunki reakcji /Noyes i inni. Proc* Natl. Acad* Sci* USA* 76, 1770 - 1774 /1979/9, otrzymuje sie cDNA znakowany 32P. Reakcje prowadzi sie w objetosci 60 /jl, w 20 mM Tris-HCl /pH 8f3/, 20 mli HCl, 8 mM MgCl2, 30 mM fi -merkaptoetanolu* W mieszaninach reakcyjnych znajduje sie 1/ug kazdego z primerów /xo jest 12/jg w calosci dla serii T-l, 4/jg w calosci dla serii T-13/, 2 jug "indukowanej" frakcji 12S mRNA /lub 10/jg nie indukowanego mRNA poli/A/ 0,5 mM dATP, dCTP, dTTP, 200 ug Ci/«£ 32P/, dCTP /Amersham, 2-3000 Ci/milimol/ i 60 jednostek odwrotnej transkryptazy /Betheada Research Laboratories/* Produkt oddziela sie od materialu nie znaczonego za pomoce seczenia zelowego na 10 ml kolumnie zelu Sephadex G-50, traktuje sie w ciegu 30 minut w temperaturze 70°c, 0,3 N roztworem NaOH w celu rozlozenia RNA i zobojetnie¬ nia HCl* Hybrydyzacje przeprowadza sie jak opisali Kafatos i inni, Nucleic Acids Res*, 7, 1541 - 1552 /1979/.D. Identyfikacja klonów pLI-pL30 Stosuje sie szybke metode izolowania plazmidów opisane przez Blrnboima 1 innych, Nucleic Acids Res*, 7, 1513 - 1523 /1979/, w celu otrzymania 1 /ug plazmidowego ONA z kazdych 500 indywidualnych transformantów E.coli szczep 294 /patrz punkt C/. Kazde próbke DNA denatu¬ ruje sie i nanosi na seczki nitrocelulozowe /po trzy jednakowe/ metode Kafatosa 1 innych /patrz wyzej/* Trzy zestawy seczków nitrocelulozowych, zawierajecych po 500 próbek plazmidu hybrydyzuje sie z: a/ indukowanym cDNA prymowanym zestawem primerów T-l, b/ indukowanym cDNA prymowanym T-13* oraz c/ nie indukowanym cDNA otrzymanym przy uzyciu obydwu serii primerów* Klony se uwazane za pozytywne, jesli hybrydyzuje silniej z jedne lub dwoma próbkami indukowa¬ nego cDNA niz z calkowicie nie indukowane próbke* Z pieciuset klonów wybiera sie trzydziesci "pozytywnych" klonów /pLl - pL30/ do dalszej analizy.E. Identyfikacja klonów pL31 - pL39 Izolowanie plazmidu /nr 104/ zawierajecego fragment genu LelF. Transformanty E.coli x 1776 poddaje sie screeningowi metode hybrydyzacji kolonii /Grustein i Bogness, Proc.Natl. Acad. Sci. USA, 72, 3961 - 3965 /1975/ stosujec jako próbke indukowany nRNA znaczony 32P /Lillen-haug i inni, Biochemistry, 15, 1858 - 1865 /1976/. Nie znaczony mRNA z nie indukowanych komórek miesza sie z próbke w stosunku 200 : 1 w celu kompetycji z nie indukowanym mRNA, obec- nym w preparacie znaczonym 0<1P# Hybrydyzacja znaczonego mRNA powinna byc uprzywilejowana w8 148 261 odniesieniu do kolonii zawierajecych indukowane sekwencje. Otrzymuje sie trzy klasy transfor¬ mantów: 1/2 - 3% kolonii hybrydyzuje z P-mRNA bardzo silnie, 2/ 10^ hybrydyzuje znacznie slabiej niz klasa 1/ oraz 3/ pozostale kolonie nie daje wykrywalnego sygnalu hybrydyzacji.Pozytywne kolonie /klasa 1 i 2/ bada sie pod wzgledem obecnosci sekwencji specy¬ ficznych dla interferonu w oznaczeniu zaleznym od hybrydyzacji mRNA specyficznego dla interfe¬ ronu z plazmidowym DNA* Najpierw hoduje sie indywidualnie 60 wybitnie pozytywnych kolonii /klasa 1/ w 100 ml podloza M9 uzupelnionego tetracykline /20 /ug/ml/, kwasem dwuaminopimeli- nowym /100 /ug/ml, tymidyne /20 /ug/ml, i d-biotyne /l /jg/ml/. Podloze M9 zawiera na litr: 6 g Na2HP04, 3 g KH2P04» 0,5 g NaCl i 1 g NH4CI. Po wyjalowieniu w autoklawie dodaje sie 1 ml jalowego 1 M MgS04 i 10 ml jalowego 0,01 M CaCl2* Tworzy sie pule z 10 hodowli i izoluje plaz¬ midowy DNA z 6 pul, jak to opisali Clewell i inni, Biochemistry, 9, 4428 - 4440 /1970/* 10 /ug z kazdej puli plazmidowego DNA rozszczepia sie Hindlll, denaturuje i wieze kowalencyjnie z OBM /dwuazobenzyloksymetylo/-bibule* Z kazdym seczkiem hybrydyzuje sie 1 /ug oczyszczonego mRNA z indukowanych komórek* Niezhybrydyzowany mRNA usuwa sie za pomoce przemywania* Specyficznie zhybrydyzowany mRNA eluuje sie i poddaje translacji w oocytach Xenopus laevis* W tym oznaczeniu wszystkie szesc pul okazuje sie negatywnymi* Z 59 slabo pozytywnych kolonii /klasa 2/ przygotowuje sie piec "pul z dziesieciu kolonii kazda 1 jedne pule z dziewieciu kolonii, przeprowadza preparatyke plazmidów i bada jak opisano wyzej* Wsród badanych 6zesciu pul* jedna KIO hybrydyzuje z mRNA interferonu na poziomach znacznie wyzszych od tla przy kazdorazowym badaniu* W celu identyfikacjo cDNA specyficznego dla interferonu przeprowadza sie preparatyke plazmidowego DNA z 9 kolonii puli K-10 i bada indywidualnie* Dwa z dziewieciu plazmidów /nr 101 i nr 104/ przyleczaje mRNA interferonu na poziomie znacznie wyzszym od tla* Z plazmidu nr 104 izoluje sie unikalny fragment restrykcyj¬ ny Bglll zawierajecy 260 b.p*, znakuje sie go 32P metode opisane przez Taylora i innych, Blochem* Biophys* Acta*, 442, 324 - 330 /1976/ i uzywa Jako próbki do niezaleznego screeningu 400 transformantów E.coli 294 metode screeningu kolonii in situ /Grunstein i Hogness* Proc* Natl. Sci* USA, 72, 3961 - 3965 /1975/* Dziewiec kolonii /pL31 - pL39/ zidentyfikowano jako hybrydyzujece w róznym stopniu z te próbke* Poza tym, w ten sam sposób do niezaleznego scree¬ ningu 4000 transformantów E.coli 294 stosuje sie znaczony fragment o 260 b*p* Identyfikuje sie 50 kolonii jako hybrydyzujece w róznym stopniu z te próbke* Oedna z próbek zawiera fragment LelF G, Jedna - LelF H, a inna zawiera fragment oznaczony LelF HI, przypuszczalnie allel LelF H* Otrzymane hybrydowe plazmidy oznaczono "pLelF H", itp* F* Izolacja i oznaczenie sekwencji pierwszego genu LelF o pelnej dlugosci* Ze wszystkich 39 potencjalnych klonów cDNA LelF otrzymuje sie plazmid DNA i po¬ nownie poddaje screeningowi z take sarne próbke DNA o 260 b*p* za pomoce metody hybrydyzacji Kafatosa 1 innych /patrz wyzej/* Trzy plazmidy /pL4, pL31, pL34/ daje bardzo silne sygnaly hybrydyzacji, cztery /pL13, pL30f pL32* pL36/ hybrydyzuje umiarkowanie, a trzy /pL6* pL8, pL14/ slabo hybrydyzuje z próbke* Poddaje sie równiez screeningowi 39 potencjalnych rekombinantowych plazmidów cDNA LelF* stosujec jako próbki bezposrednio do hybrydyzacji syntetyczne undekamery znaczone 2P /indywidualne pule primerów Tl, lub indywidualne primery T13/* Wybiera sie takie warunki hybrydyzacji, ze do wykrycia sygnalów hybrydyzacji wymagane jest dokladne parowanie zasad /Wallace i inni, Nucleic Acids Res*, 6, 3543 - 3557 /1979/. Tak wiec, w standardowy sposób metode klarowanych lizatów /Clewell i inni, patrz wyzej/, otrzymuje sie plazmidowy DNA z 39 klonów i oczyszcza za pomoce chromatografii kolumnowej na kolumnie Biorad Agarose A-50.. Próbki po 3 /tig kazdego preparatu przeprowadza sie w postac linearne za pomoce EcoRI, denaturuje w odczynie zasadowym i nakrapla na 2 oddzielne seczki nitrocelulozowe, po 1,5 /4jg na miejsce /Kafatos i inni, patrz wyzej/. Indywidualne syntetyczne primery dezoksyoli- gonukleotydowe i pule primerów poddaje sie fosforylacji za pomoce )T P/ ATP w nastepujecy sposób: 50 pikomoli oligonukleotydu i 100 pikomoli / f32p/ATP /New England Nuclear, 2500 Ci/ milimol/ leczy sie w 30 /jl 50 mM Tris-HCl, 10 mM MgCl2, 15 mM fi-merkaptoetanolu* Dodaje sie 2 jednostki kinazy polinukleotydowej T4 i po 30 minutach inkubacji w temperaturze 37°C oczysz- cza sie polimery znaczone P za pomoce chromatografii na 10 ml kolumnach zelu Sephadex G-50* Hybrydyzacje przeprowadza sie stosujec primer T-130 /106 zliczen/min/ lub pule primerów T-1C / 3 x 10 zliczen/min/* Hybrydyzacje przeprowadza sie w temperaturze 15°C w ciegu 14 godzin w 6 x SSC /l x SSC « 0,15 M NaCl, 0,015 M cytrynian sodowy, pH 7,2/, 10 x w roztworze Denhardta148 261 9 /0,2% bydleca albumina surowicza, 0,2% pilowinylopirolidon, 0,2% Ficoll/, Jak opisali Wallace i inni /patrz wyzej/. Seczki przemywa sie w ciegu 5 minut /3 razy/ w temperaturze 0°C w 6 x SSC, suszy i eksponuje na blonie czulej na promienie X. Wyniki przedstawiono na fig.2 dla puli 32P-primerów T-13C i T-1C.Stwierdzono, ze plazmidowy DNA z klonu 101 wykazuje znaczne hybrydyzacje z pule primerów T-1C i primerem T-13C, ale nie wykazuje wykrywalnej hybrydyzacji z innymi udekame- rami. Jak przedstawiono na fig.2, kilka z potencjalnych plazmidów LelF /pL2, 4, 13, 17, 20, 30, 31, 34/ równiez hybrydyzuje z obydwoma próbkami. Tym niemniej analiza restrykcyjna wykazuje, ze tylko jeden z tych plazmidów, pL31, zawiera równiez wewnetrzny fragment Bglll o 260 b.p. Trawienie pL31 za pomoce Pstl wykazuje, ze dlugosc Insertu cDNA wynosi okolo 1000 b.p.Analizuje sie sekwencje calego insertu Pstl z pL31 zarówno chemiczne metode Maxama-Gilberta /Methods Enzymol., 65, 499 - 560'/1960/, jak i metode dwuazoksy zakonczenia lancucha /Smith, Methods Enzymol,, 65, 560 - 560 /1980/ po podklonowaniu fragmentów Sau3a do nosnika M13. Sekwencje ONA przedstawiono na fig.3 /•A"/. Odpowiednie translacyjne faze odczyty- wania mozna przewidziec z posiadanej informacji co do sekwencji aminokwasów w bialku, znanego zakresu ciezarów czesteczkowych LelF i wzglednego wystepowania trypletów stop w trzech mozli¬ wych fazach odczytywania, co z kolei pozwala przewidziec calkowite sekwencje aminokwasów, wlecznie z prepeptydem lub peptydem sygnalowym. Pierwszy kodon inicjacji translacji ATG stwierdzono z pozycji 60 sekwencji nukleotydów od konca 5#, a nastepnie o 188 kodonów dalej wystepuje tryplet zakonczenia TCA, tak wiec istnieje 342 nie ulegajece translacji nukleotydy na koncu 3#, a nastepnie sekwencja poli /A/.Domniemany peptyd sygnalowy /przypuszczalnie zaangazowany w wydzielaniu dojrzale¬ go LelF z leukocytów/ ma dlugosc 23 aminokwasów, 165 aminokwasów skladajecych sie na dojrzaly LelF ma wyliczony ciezar czesteczkowy 19 390. LelF kodowany przez pL31 nazwano LelF A.Peptydy trypsynowe Tl i T13 LelF B odpowiadaje aminokwasom 145 - 149 i 57 - 61 w odniesieniu do LelF A, jak to jest widoczne z danych dotyczecych sekwencji /"A"/ na fig.4. Faktycznymi kodujecymi sekwencjami DNA znajdowanymi w tych dwóch regionach se sekwencje reprezentowane przez pule primerów Tl-C i primer T13-C /patrz fig.8/.G. Wytwarzanie E.coli 294/pLeIF A trp 25 1* Uwagi ogólne. Metoda ekspresji LelF bezposrednio jako dojrzalego interferonu jest wariantem metody wczesniej uzywanej dla ludzkiego hormonu wzrostu /Goeddel i inni.Nature, 281, 544 - 548 /1979/, w tym zakresie w jakim wlecza kombinacje syntetycznego /N-kon- cowego/ i komplementarnych DNA.Oak wskazano na figurze 6, miejsce endonukleazy restrykcyjnej Seu3a jest dogod¬ nie ulokowane miedzy kodonami 113 LelF A. Zaplanowane se dwa syntetyczne dezoksynukleotydy, które wleczaje kodon inicjacji translacji ATG, przywracaje kodon pierwszego aminokwasu /cysteina/ i tworze lepkie konce EcoRI. Oligomery te leczy sie z fragmentem Sau3a - AvaII pL31 o 34 b.p. Powstaly produkt o 45 b.p. leczy sie z dwoma dodatkowymi fragmentami DNA w celu konstrukcji hybrydowego genu syntetyczno - naturalnego kodujecego LelF oraz zakonczone¬ go miejscami restrykcyjnymi EcoRI i Pstl. Gen ten wlecza sie do pBR322 miedzy miejsca EcoRI i Pstl otrzymujec plazmid pLelF Al. 2. Konstrukcja tryptofanowego elementu kontrolnego /zawierajecego promotor trp E.coli, operator i liderowe miejsce przyleczenia rybosomów trp, ale bez sekwencji inicjacji translacji /ATG7 • Plazmid pGMI zawiera tryptofanowy operon E.coli z delecje A LE1413 /~Mlozzari i inni, J.Bacteriology, 133, 1457 - 1466 /1%73/J * dlatego doprowadza do ekspresji poleczone¬ go bialka zawierajecego 6 pierwszych aminokwasów lidera trp i w przyblizeniu 3 ostatnie aminokwasy polipeptydu E trp /w dalszej czesci opisu lecznie nazywanego LE#/» j&fc równiez polipeptyd D trp w calosci, wszystko pod kontrole ukladu promotor - operator. Plazmid w ilos¬ ci 20/ug trawi sie enzymem restrykcyjnym PvuII, który rozszczepia plazmid w 5 miejscach.Fragmenty genu leczy sie nastepnie z lecznlkami EcoRI /skladajecymi sie z 6eaokomplementar- nego oligonukleotydu o sekwencji pCATGAATTCATG/ zapewnlajec miejsce rozszczepienia EcoRI do pózniejszego klonowania do plazmidu zawierajecego miejsce EcoRI.Fragmenty DNA w ilosci 20 /jg otrzymane z pGMI traktuje sie w ciegu nocy w tempe- rat. 4°C 10 jednostkami ligazy DNA T4 w obecnosci 200 pikomoll 5#- fosforylowanego syntetycz¬ nego oligonukleotydu pCATGAATTCATG w 20 /ii buforu dla ligazy DNA T4 /20 aM Tris, pH 7,6,10 148 261 0.5 mM ATP, 10 mM MgCl2# 5 mM dwutiotreitol/* Nastepnie roztwór ogrzewa sie w ciegu 10 minut w temperaturze 70°c w celu zatrzymania laczenia. Laczniki rozszczepia sie przez trawienie EcoRI, rozdziela sie za pomoce elektroforezy w 5% zelu poliakryloamidowym /w dalszej czesci opisu okreslonym Jako PAGE/ i izoluje sie w zelu trzy najwieksze fragmenty przez, po pierwsze, barwienie bromkiem etidium, zlokalizowanie fragmentów w swietle ultrafioletowym i wyciecie z zelu interesujacych czesci* Kazdy fragment umieszcza sie w woreczku dializujacym wraz z 300 u litrami 0,1 x T6E i poddaje w ciegu 1 godziny elektroforezie w 0,1 x buforze TBE przy róznicy potencjalów 100 V /bufor TBE zawiera 10,8 g Iris w postaci zasady 5,5 g kwasu borowego, 0,09 g Na2EDTA w 1 litrze wody/* Zbiera sie wodny roztwór z woreczka dializacyjnego, ekstrahuje fenolem, ekstrahuje chloroformem, doprowadza do stezenia 0,2 M chlorkiem sodowym i odzyskuje DNA w wo¬ dzie po straceniu etanolem* Gen zawierajecy promotor - operator trp z lepkimi koncami EcoRI identyfikuje sie metode opisana dalej, wymagajece insercji fragmentów do plazmidu wrazliwego na tetracykline, który po wleczeniu promotora - operatora staje sie oporny na tetracykline* Plazmid pBRHI /Rodriguez i inni, Nucleic Acids Res, 6, 3267 - 3287 /19797 wykazuje ekspresje opornosci na ampicyline i zawiera gen opornosci na tetracykline, ale nie majec przyleczonego promotora, nie wykazuje ekspresji tej opornosci* Plazmid jest skutkiem tego wrazliwy na tetracykline* Przez wprowadzeniu ukladu promotor - operator do wiejsca EcoRI, plazmid mozna uczynic opornym na tetracykline* Plazmid pBRHI trawi sie EcoRI i usuwa enzym za pomoce ekstrakcji fenolem, a nastep¬ nie chloroformem i odzyskuje w wodzie po streceniu etanolem* Powstajece czesteczki DNA miesza sie w oddzielnych mieszaninach reakcyjnych z kazdym z trzech fragmentów DNA otrzymanych jak opisano wyzej i leczy sie za pomoce ligazy DNA T4, jak opisano wyzej* DNA obecny w mieszaninie reakcyjnej stosuje sie do transformowania zwyklymi metodami kompetentnej E.coli K-12 szczep 294 /"Hershfield i inni. Proc. Natl. Acad* Sci. USA, 71, 3455 - 3459 /197AJ i wysiewa bakterie na plytki LB /Luria-Bertani/ zawierajece ampicyline w stezeniu 20/jg/ml i tetracykline w stezeniu 5 yug/ml. Selekcjonuje sie kilka kolonii, izoluje plazmidowy DNA i potwierdza obecnosc zedanego fragmentu za pomoce analizy enzymami restrykcyjnymi* Powstaly plazmid nazwano pBRHtrp* Produkt trawienia EcoRI i BamHI genomu wirusa hepatitis B otrzymuje sie zwyklymi sposobami i klonuje do miejsc EcoRI i BamHI plazmidu pGHG £~Goeddel i inni. Nature, 281, 544 /197§7 w celu utworzenia plazmidu*pHS32. Plazmid pHS32 rozszczepia sie Xbal, ekstrahuje fenolem, nastepnie chloroformem i wytreca etanolem* Nastepnie otrzymany material traktuje ar ciegu 30 minut w temperaturze 0 C 1 /jl polimerazy DNA I E*coli /fragment Klenowa/ produkcji Boehringer - Mannheim, w 30 ul buforu polimerazy /50 mM fosforan potasowy, pH 7,4, 7 mM MgCl2» 1 «M /-merkaptoetanol/ zawierajecego 0,1 nM dTTP i 0,1 mM dCTP, a nastepnie w ciegu 2 godzin w temperaturze 37°C* Traktowanie to powoduje, ze 2 z 4 nukleotydów staje sie komplementarne do wystajecego konca miejsca rozszczepienia Xbal do uzupelnienia w: 5* CTAGA 5* CTAGA 3# T 3* TCT Dwa nukleotydy, dC i dT zostaje wleczone dajec zakonczenie o dwóch wystajecych nukleotydach 5** Te linearne pozostalosc plazmidu pHS32 /po ekstrakcji fenolem, chloroformem oraz odzyskaniu w wodzie po streceniu etanolem/ rozszczepia sie EcoRI* Duzy fragment plazmidu oddziela sie od mniejszego fragmentu EcoRI - Xbal za pomoce PAGE i izoluje po elektroelucji* Ten fragment DNA otrzymany z pHS32 /0,2/jg/ leczy sie w warunkach podobnych do wyzej opisanych z fragmentem EcoRI - Taql operonu tryptofanowego / r** 0,01 yug/, otrzymanym z pBRHtrp* W procesie leczenla fragmentu otrzymanego z pHS32 z fragmentem EcoRI - Taql, jak opisano wyzej, leczy sie wystajecy koniec Taql z pozostalym wystajecym koncem Xbel, nawet jesli nie se one calkowicie sparowane w sposób zgodny z zasade Watsone i Cricka: T CTAGA -TCTAGA * - AGC TCT -AGCTCT Czesc tej mieszaniny reakcyjnej, w której odbywalo sie leczenie, transformuje sie do komórek E.coli 294, poddaje sie obróbce cieplnej i wysiewa na plytki LB zawierajece ampicy-148 261 11 line. Wybiera sie 24 kolonie, prowadzi ich hodowle w 3 ml podloza LB /Lauria - Bertanl/ i izoluje sie plazmid* Stwierdzono, ze szesc sposród tych plazmidów na miejsce Xbal zregenero¬ wane przez reperacje DNA katalizowane przez E.coli 1 replikacje: ZCTAGA TCTAGA - —__ AGCTCT AGATCT Stwierdzono równiez* ze plazmidy te rozszczepiane ee zarówno przez EcoRI, Jak i Hpal. dajec oczekiwane fragmenty restrykcyjne. Plazmidu oznaczonego Jako pTrpl4, uzywa sie do ekspresji heterologicznych polipeptydów. Jak opisano dalej* Plazmid pHGH 107 /"Goeddel i inni, Nature, 281, 544 /197?7 zawiera gen ludzkiego hormonu wzrostu skledajecy sie z 23 kodonów aminokwasów otrzymanych z fragmentów syntetyczne¬ go ONA i 163 kodonów aminokwasów otrzymanych z komplementarnego DNA otrzymanego za pomoce od¬ wrotnej transkrypcji mRNA ludzkiego hormonu wzrostu. Gen ten. w którym brak kodonów "pre" sekwencji ludzkiego hormonu wzrostu, zawiera kodon inicjacji translacji ATG. Gen izoluje sie .z 10 ug pHGH 107 przez dzialania EcoRI, a nastepnie polimerazy DNA. I E.coli /fragment Klono¬ wa/ i dTTp oraz dATP, Jak opisano wyzej* Po ekstrakcji fenolem 1 chloroformem oraz wytreceniu etanolem, plazmid traktuje sie BamHI» Fragment zawierajecy gen ludzkiego hormonu wzrostu /HGH/ izoluje sie za pomoce PAGE, a nastepnie elektroelucji. Otrzymany fragment ONA zawiera równiez pierwsze 350 nukleoty- dów genu strukturalnego opornosci na tetracykline, ale brak w nim ukladu promotor - operator tak, ze gdy zostanie klonowany dla plazmidu wykazujacego ekspresje, mozna zlokalizowac plazmi¬ dy zawierajece insert przez przywrócenie opornosci na tetracykline. Poniewaz EcoRI - koniec fragmentu uzupelniono metode z uzyciem polimerazy I /fragment Klenowa/, fragment ten zawiera Jaden wolny koniec i Jeden koniec lepki, co zapewnia prawidlowe orientacje po pózniejszym wleczeniu do plazmidu wykazujacego ekspresje.Wytwarza sie nastepnie plazmid ekspresji pTrpl4 w celu przyjecia fragmentu zawiera¬ jecego gen HGH, otrzymanego jak opisano wyzej. Tak wiec trawi sie pTrpl4 Xbel i powstale lepkie konce uzupelnia metode z uzyciem polimerazy I /fragment Klenowa/ i dATP, dTTP, dGTP, dCTP.Po ekstrakcji fenolem i chloroformem oraz wytreceniu etanolem, powstaly ONA traktuje sie BamHI otrzymany duzy fragment plazmidu izoluje sie za pomoce PAGE, a nastepnie elektroelucji» Fragment otrzymany z pTrpl4 zawiera jeden wolny koniec 1 jeden koniec lepki, co pozwala na rekombinacje w prawidlowej orientacji z fragmentem zawierajecym gen HGH, opisanym poprzednio.Fragment genu HGH i fragment & Xbe-BamHI pTrpl4 miesza sie i leczy w warunkach podobnych do opisanych wyzej• Uzupelnione konce Xbal i EcoRI leczy sie metode leczenia wolnych konców w celu od¬ tworzenia miejsca zarówno Xbal jak i EcoRI: Uzupelniony Xbal Uzupelniony EcoRI Inicjacja genu HGH TCTAG AATTCTATG TCTAGAATTCTATG ? AGATC TTAAGATAC AGATCTTAAGATAC Xbal EcoRI Konstrukcja te przywraca równiez ekspresje genu opornosci na tetracykline. Ponie¬ waz plazmid pHGH 107 wykazuje ekspresje opornosci na tetrecykline od promatora w góre /promo¬ tor lac/, konstrukcja ta, oznaczona pHGH 207, pozwala na ekspresje genu opornosci na tetra¬ cykline pod kontrole ukladu promotor - operator tryptofanowy. Tak wiec mieszanine reakcyjne, z której odbywalo sie laczenie, transformuje sie E.coli 294 i dokonuje selekcji kolonii na plytkach LB zawierajecych tetracykline w stezeniu 5/jg/ml.Plazmid pHGH 207 trawi sie EcoRI i za pomoce PAGE, a nastepnie elektroelucji od¬ zyskuje sie fragment o 300 b.p. zawierajecy promotor trp, operator i liderowe miejsce przyla¬ czenia rybosomów trp, ale bez sekwencji inicjacji translacji ATG. Ten fragment DNA klonuje sie do miejsca EcoRI pLelF A. Plazmidy wykazujace ekspresje, zawierajece zmodyfikowany jak wyzej, regulon trp /operon trp E.coli, z którego usunieto sekwencje oslabiajaca w celu mozli¬ wego do kontrolowania podwyzszenia poziomu ekspresji/ mozna hodowac do ustalonego poziomu w12 148 261 podlozach odzywczych zawierajecych tryptofan w ilosciach niezbednych do represji ukladu promotor - operator, a nastepnie pozbawionych tryptofanu w celu depresji ukladu i mozliwos¬ ci ekspresji zadanego produktu.Bardziej szczególowo i w odniesieniu do fig.6, 250 /jg plazmidu pL31 trawi sie Pstl i insert o 1000 b.p. izoluje sie za pomoce elektroforezy w 6% zelu poliakryloamidowym.Dokonuje sie elektroelucji z zelu okolo 40 ug insertu i dzieli go na 3 próbki do dalszego t rawienia: a/ trawi sie czesciowo 16 /ug próbke tego fragmentu 40 jednostkami Bgllll w ciegu 45 minut w temperaturze 37°C i oczyszcza mieszanine reakcyjne w 6% zelu poliakryloamidowym* Odzyskuje sie okolo 2 /ug zadanego fragmentu o 670 b*p* b/ 8 /jg insertu Pstl o 1000 b*p», jako inne próbke, poddaje sie dzialaniu AvaII i Bglll. Za pomoce elektroforezy w zelu odzyskuje sie 1 yug wskazanego fragmentu o 150 b.p. c/ 16 AJg fragmentu o 1000 b.p. traktuje sie Sau3a i AvaII. Po elektroforezie w 10% zelu poliakryloamidowym odzyskuje sie okolo 0,25 yug /10 pikomoli/ fragmentu o 34 b.p. Dwa wskazane oligodezoksynukleotydy, 5#-dAATTCATGTGT /fragment 1/ i 5#-dGATCACAGATG /fragment 2/ syntetyzuje sie metode fosfotroestrowe* Fragment 2 fosforyluje sie w nastepujecy sposób: "200 A*l /r^/40 pikomoli/ }f 32P/ ATP/Amersham, 5000 Ci/milimol/ przeprowadza sie w proszek i zawiesza w 30 1 60 mh Tri6-HCl /pH 8,0/, 10 mM MgCl2# 15 mM p-merkaproetanolu zawierajecym 100 pikomoli fragmentu DNA i 2 jednostki kinazy polinukleotydowej T4. Po 15 minutach inoku- lacji w temperaturze 37°C dodaje sie 1/jl 10 mM ATP i prowadzi reakcje w ciagu dalszych 15 mi¬ nut* Nastepnie mieszanine reakcyjne ogrzewa sie w ciegu 15 minut w temperaturze 70°C, miesza z 100 pikomolami fragmentu 1 5*-OH i 10 pikomolami fragmentu Sau3a - AvaII o 34 b.p. Leczenie przeprowadza sie w ciagu 5 godzin w temperaturze 4°C w 50 /ul 20 mM Tris-HCl /pH 7,5/, 10 mM MgCl2, 10 mM dwutiotreitolu, 0,5 mM ATP w obecnosci 10 jednostek ligazy DNA T4.Mieszanine poddaje sie elektroforezie w 6% zelu poliakryloamidowym i odzyskuje produkt o 45 b.p. za pomoce elektroelucji. Okolo 30 /ug /l pikomol/ produktu o 45 b.p* miesza sie z 0,5 ug /5 pikomoli/ fragmentu AveII - Bglll o 150 b.p* i 1/ug /2 pikomole/ fragmentu Bglll - Pstll o 670 b.p. Leczenie przeprowadza sie w temperaturze 20°c w ciegu 16 godzin z uzyciem 20 jednostek ligazy DWA T4. Ligaze inaktywuje sie przez ogrzewanie do temperatury 65 C w ciegu 10 minut* Nastepnie w celu wyeliminowania polimerów genu mieszanine trawi sie EcoRI i Pstl* Mieszanine oczyszcza sie z zastosowaniem 6% PAGE* Izoluje sie 20/ug /0,04 pikomola/ produktu o 865 b.p. Polowe tej ilosci /10/jg/ wlacza sie do pBR322 /0,3 /jg/ miedzy miejsca EcoRI a Pstl* Transformacja E.coli 294 daje 70 transfornantów opornych na tetracykline, wrazli¬ wych na ampicyline* Plazmidowy DNA izolowany z 18 tych transformantów trawi sie EcoRI i Pstl* Sposród tych 18 plazmidów 16 mialo fragment EcoRI - Pstl o dlugosci 865 b.p. Jeden /jg jednego z tych plazmidów pLelF Al trawi sie EcoRI i leczy z 0,1 /ug fragmentu EcoRI o 300 b.p. zawiera¬ jecego promotor trp i liderowe miejsca przylaczenia rybosomów trp, otrzymanego jak opisano 32 wyzej* Transfornanty zawierajece promotor trp identyfikuje sie z uzyciem próbki -P-trp w poleczeniu z metode screeningu kolonii Grunstelna-Hognesea* Asymetrycznie umieszczone we frag¬ mencie trp miejsce Xbal pozwala na okreslenie rekorobinantów, w których promotor trp zoriento¬ wany byl w kierunku genu LelF A* 3* Aktywnosc LelF A in vitro i in vivo* Ekstrakty przygotowuje sie do badania IF w nastepujecy sposób* Prowadzi sie 1 ml hodowle w podlozu L zawierajecym tetracykline w stezeniu /jg/ml do wartosci A550 okolo 1,0 i rozciencza do objetosci 25 ml podlozem M9 zawierajecym tetracykline w stezeniu 5/jg/ml* Gdy wartosc A550 osiagnie 1,0 zbiera sie przez odwirowanie 10 ml próbki i osad komórek zawiesza w 1 ml 15% sacharozy, 50 mM Tris-HCl /pH 8,0/, 50 mM EDTA* Dodaje sie 1 mg lizozymu i po 5 mi- o nutach inkubacji w temperaturze 0 C komórki rozbija sie przez nadzwiekowienie* Próbki .odwiro¬ wuje sie w ciegu 10 minut /l5000 obrotów/minute/ i okresla aktywnosc LelF w supernantantach w porównaniu ze standardowymi LelF na podstawie zahamowania efektu cytopatycznego /CPE/* W celu okreslenia ilosci czasteczek IF na komórke uzywa sie LelF o aktywnosci wlasciwej 4 x 10 jednostek/mg* Jak przedstawiono w tablicy 1, klony pLelF A trp 25, do których promotor trp zostal wleczony w zadanej orientacji, wykazuje wysoki poziom aktywnosci /tak wysoki, jak 2,5 x 108 jednostek/litr/* 3ak przedstawiono w tablicy 2;IF wytworzony przez E.coli K-12 szczep 294/146 261 13 pLelF A trp 25 zachowuje sie podobnie do oryginalnego ludzkiego LelF* Oeat on stabilny w pH 2 i ulega neutralizacji przez królicze przeciwciala przeciw ludzkim leukocytom* Interfe¬ ron wykazuje ciezar czesteczkowy okolo 20000* Skuteczne dzialanie interferonu in vivo wymaga obecnosci makrofagów i natural¬ nych komórek zabijajacych /MK/* Mechanizm dzialania in vivo obejmuje stymulacje tych komórek* Tak wiec pozostaje mozliwe, ze interferon tworzony przez E.coli 294/pLeIF A 25, wykazujacy aktywnosc w badaniu w hodowlach komórkowych, nie wykazywalby aktywnosci w orga¬ nizmie zakazonych zwierzat* Ponadto przeciwwirusowa aktywnosc LelF A wytworzonego przez bakterie, nie glikozylowanego, moze róznic sie od aktywnosci LelF otrzymanego z ludzkich leukocytów "buffy coat"* Tak wiec, porównuje sie aktywnosc biologiczna wytworzonego przez bakterie LelF A /2% czystosci/ z aktywnoscie LelF "buffy coat" /8% czystosci/ w smiertelnym zakazeniu wirusem zapalenia mózgu i miesnia sercowego u malp seimiri /tablica 3/* Tablical Aktywnosc interferonu w ekstraktach E.coli i E.coli K-12 | Gestosc ' Aktywnosc IF i Ilosc czasteczek szczep 294 trans- , komórek ¦ jednostki /ml , LelF na komórke formowany przez /komórki/ml i hodowli pLelF A trp 25 J 3.5 x 108 i 36,000 ' 9,000 pLelF A trp 25 ¦ 1,8 x 109 , 250,000 ¦ 12,000 Tablica 2 Porównanie aktywnosci ekstraktów E.coli 294/pLeIF A ze standardem LelF*' §Aktywnosc interferonu /jednostki/ml/ 1 nie poddany ' pH 2 ' królicze przeciwciala 1 obróbce ' ' przeciw leukocytom i L L lydzkim m ekstrakt 294/pLeIF A trp 25 standard LelF i i i i 500 500 i i 500 500 l i i i < < 10 10 W powyzszej tablicy 2 uzyto nastepujacych oznaczen: x/ Ekstrakt E*coli 294/pLeIF A trp 25 o aktywnosci 250000 jednostek/ml opisany w tablicy 1 rozciencza sie 500 x minimalnym podlozem podstawowym, co daje aktyw¬ nosc wlasciwa 500 jednostek/ml* Standard interferonu leukocytów /Wadley Institute/, uprzednio wymiareczkowany wobec standardu interferonu leukocytów NIH, równiez rozciencza sie do koncowego stezenia 500 jednostek/ml* Próbki o objetosci 1 ml doprowadza sie do pH 2 za pomoca 1 N HCl, inkubuje w temperaturze 4°C w ciagu 52 godzin i zobojetnia przez dodanie NaOH, po czym okresla aktywnosc interferonu w zwyklym badaniu zahamowania CPE. Próbki o objetosci 25 /Ol o aktywnosci 500 jednostek/ml /nie poddane obróbce/ inkubuje sie z 25/ul roztworu króliczych o przeciwcial leukocytom ludzkim w temperaturze 37 C w ciagu 60 minut, wiruje przy 12000 x g przez 5 minut i bada supernatant*14 148 261 Tablica i Czynnik , dzialajacy Kontrola 1 /bialka , bakteryjne/ 1 Bakteryjny , LelF A Standard i LelF i i i i i i i i i i i i i i i • i i Dzialanie przeciw Ilosc zwierzet przezywa- Jecycn 0/3 3/3 3/3 przeciwwirusowe róznych preparatów LelF zakazeniu wirusem Surowicze dzien 2 10 "\ 0 3 oJ 0 0 0 0 0 0 EMC u malp saimiri czynniki tworzece lysinki 1 dzien 3 \ 3xl04 ~) ' ° 1 i 0 J ^io4 i 0 1 0 i 0 i 0 1 0 i 0 , jednostki 1 dzien 4 105 * 1 1,200 i 0 < i 0 1 o i 0 i 0 1 o i 0 na ml i : f3,4xl04 i ) ; Wszystkie malpy se samcami /sredni ciezar 713 g/ i nie wykazuje przed zakazeniem przeciwcial przeciw wirusowi EMC* Malpy zakaza sie domiesniowo 100 x LD5q wirusa EMC /oznaczo¬ nymi na myszach/* Malpy kontrolne padly po 134, 156 i 164 godzinach od zakazenia* Leczenia interferonem /106 jednostek/ dokonuje sie przez dozylne podawanie w godzinach: -4t +2, 23, 29, 48, 72, 166 i 240 w stosunku do czasu zakazenia* Bakteryjny interferon leukocytów jest frakcje otrzymane przy prowadzeniu chromatografii kolumnowej lizatu E*coli 294/pLeIF A 25 o aktywnosci wlasciwej 7,4 x 10° jednostek/mg bialka* Kontrolne bialka bakteryjne se równowazne frakcje otrzymane przy prowadzeniu chromatografii kolumnowej lizatu E.coli 294/pBR322 przy dwukrotnym zageszczeniu bialka calkowitego* Standardem interferonu leukocytów jest interferon indukowany wirusem Sendai, z normalnych komórek ludzkich "buffy coat", oczyszczony chromatograficznie do aktywnosci wlasciwej 32 x 106 Jednostek/ag bialka* Malpy kontrolne wykazywaly postepujecy letarg* utrate równowagi, porazenie wiot¬ kie tylnych konczyn i zaburzania w równowadze plynów zwiezane z oczami, zaczynajece sie osiem godzin przed smiercie* Malpy leczone interferonem nie wykazywaly zadnego z tych nienormalnych objawów, pozostawaly aktywne przez caly czas 1 nie wykazywaly wiremii* Jedyna malpa w grupie kontrolnej* u której nie powstala w ciegu 4 dni wiremia, padla ostatnia /164 godziny po zaka¬ zeniu/* Wykazywala ona jednak wysokie miana wirusa w sercu i mózgu post aortem* U malp leczo¬ nych interferonem nie powstawaly przeciwciala przeciw wirusowi EMC, jak to oznaczono 14 1 21 dnia po zakazeniu. Wyniki te wykazuja, ze przeciwwirusowe dzialanie preparatów LelF u zakazonych zwierzet moze byc przypisane jedynie interferonowi, poniewaz bialka zanieczyszczajace se cal¬ kowicie rózne w preparatach bakteryjnych i "buffy coat"* Wyniki te wskazuje poza tym, ze glikozylacja nie Jest wymagana jesli chodzi o aktywnosc przeciwwirusowe LelF A in vivo* Przyk lad II* Wytwarzanie szczepów E.coli zdolnych do wytwarzania doj¬ rzalych LelF B - H.Z plazmidu zawierajecego calkowicie scharakteryzowany cONA LelF A wycina sie DNA za pomoce Pstl, izoluje elektroforetycznie i znakuje 32P* Otrzymanego znaczonego promienio¬ twórczo DNA uzywa sie jako próbki do screeningu dodatkowych transformantów E.coli 294, otrzy¬ manych w ten sam sposób jak opisano w czesci B przykladu I, metode screeningu kolonii in situ 6run6telna i Hogaessa /patrz wyzej/* Izoluje sie kolonie hybrydyzujece z próbke w róznych148 261 15 ilosciach. Izoluje sie plazmidowy DNA z tych kolonii oraz dziesieciu hybrydyzujecych kolo¬ nii okreslonych w czesci G, jak wyzej, przez przeciecie Pstl i charakteryzuje trzema róznymi metodami* Po pierwsze, fragmenty Pstl charakteryzuje sie przez sposób, w jaki trawione sa one przez endonukleazy restrykcyjne, z uzyciem enzymów Bgl II, Pvu II i EcoRI. Analiza ta pozwala na klasyfikacje co najmniej osmiu róznych typów /LelF A, LelF B, LelF C, LelF D, LelF E, LelF F, LelF G i LelF H/ przedstawionych na fig.5, gdzie rózne naciecia restrykcyjne przedstawione se /w przyblizeniu/ wzgledem dodatkowej znanej presekwencji i sekwencji koduje- cej LelF A* Uwaza sie, ze jeden z nich, LelF D jest identyczny z tym,o którym doniesli Negata i inni, Nature, 284, 316 - 320 /1980/.Po drugie, rózne DNA bada sie metode selekcji hybrydyzacyjnej, opisane przez Clevelanda i innych. Celi, 20, 95 - 105 /l980/, pod wzgledem zdolnosci do wybiórczego usuwa¬ nia mRNA LelF z RNA komórek KG-1 zawierajecego poli A. LelF A, B, C i F okazaly sie w tej próbie pozytywne.Po trzecie, dalsze fragmenty Pstl wprowadza sie do plazmidu wykazujecego ekspresje, transformuje tym plazmidem E.coli 294 i doprowadza do ekspresji fragmentów. Produkty ekspre¬ sji, co do których uwaza sie, ze zawieraje pre-interferony, byly wszystkie pozytywne w badaniu aktywnosci CPE interferonu, aczkolwiek w przypadku fragmentu LelF aktywnosc byla bliska grani¬ cy. Oprócz powyzszych badan wszystkie trzy LelF poddano badaniu sekwencji* A. Wytwarzanie E.coli 294 /pLelF B trp 7.Sekwencja izolowanego fragmentu zawierajecego gen dojrzalego LelF B wskazuje na pierwsze 14 nukleotydów identycznych w typie A i B. Zgodnie z tym izoluje sie fragment genu pLelF A25 zawierajecy uklad promotor-operetor trp, miejsce przylaczenia rybosomów i startu genu LelF A /»B/ i miesza z pozostaloscia, czesci sekwencji B w plazmidzie wykazujecym ekspre¬ sje. Odpowiednie mapy restrykcyjne fragmentu Pst pL4 /plazmid zawierajecy gen LelF B zakon¬ czony Pst, pokazany na fig.5/ i pLelF A25 przedstawiono na rysunku, odpowiednio na fig.7a i 7b.Dla otrzymania fragmentu Sau3a - Pstl o okolo 950 b.p. z sekwencji przedstawionej na fig.7a, niezbednych jest kilka stadiów, a to z powodu obecnosci jednego lub kilku wytre- conych miejsc restrykcyjnych Sau3af a mianowicie: 1. Izoluje sie nastepujace fragmenty: a/ Sau3a-EcoRI o 110 b.p., b/ EcoRI-Xba o 132 b.p. oraz c/ Xba-Pst o 700 b.p, 2. Fragmenty /la/ i /Ib/ leczy sie i nacina za pomoce Xba i Bglll w celu zapobie¬ zenia samopolimeryzecji koncami Sau3a i Xba /zwiazane z omawiane sprawe miejsce Sau3a znajdu¬ je sie w miejscu Bglll, a Bglll nacina z pozostawieniem lepkiego konca Sau3a/. Izoluje sie fragment o 242 b.p. 3. Produkty otrzymane w stadiach /2/ i /lc/ leczy sie i nacina Pst i Bglll, takze w celu zapobiezenia samopolimeryzacji. Izoluje sie odpowiedni fragment Sau3a - Pst I o 950 b.p. /fig.7a/« Fragment ten zawiera czesc genu LelF B, która nie jest wspólna z LelF A. 4. Z pLelF A25 izoluje sie fragment Hindlll - Sau3a o okolo 300 b.p. zawierajecy uklad promotor-operator trp, miejsce przyleczenia rybosomów, sygnal startu ATG i kodon cysteiny LelF A. 5. z pBR322 izoluje sie fragment Pstl - Hindlll o okolo 3600 b.p. Zawiera on repli- kon i koduje opornosc na tetracykline, ale nie na ampicyline. 6. Fragmenty otrzymane w stadiach /3/, /4/ i /5/ leczy sie razem i powstalym plaz¬ midem transformuje komórki E.coli K-12 szczep 294.Transformanty poddaje sie miniscreeningowi / Birnboim i inni, Nucleic Acid Res., 7, 1513 - 1523 /1979/ i próbki plazmidu trawi EcoRI. Produkt trawienia dostarcza 3 fragmenty o nastepujecej charakterystyce: 1/ fragment EcoRI - EcoRI promotora trp, 2/ wewnetrzny fragment EcoRI - EcoRI pL 4, oraz 3/ fragment bialkowy sygnalu poczetku translacji - EcoRI pL 4.Ekstrakty bakteryjne klonów otrzymanych w powyzszy sposób wykazuje zwykle w próbie CPE okolo 10 x 106 jednostek aktywnosci interferonu na litr A550 « i. Oednym z reprezenta¬ tywnych klonów otrzymanych w ten sposób jest E.coli 294/pLeIF B trp 7.16 148 261 B* Wytwarzanie szczepów E.coli zdolnych do wytwarzania dojrzalych interferonów leukocytów /LelF C,D,FfH/* Dodatkowe fragmenty genów /o pelnej dlugosci/ innych typów LelF mozna poddawac obróbce 1 wprowadzac do nosników ekspresji tak, jak w przypadku LelF A. Badanie calkowitej sekwencji zwyklymi srodkami ujawni, czy miejsce restrykcyjne lezy dostatecznie blisko kodonu pierwszego aminokwasu dojrzalego interferonu typu pozwalajacego na dogodne podjecie dzialan zastosowanych w czesci G przykladu I, jak wyzej* w celu ekspresji dojrzalego LelF A, to Jest eliminacji presekwencji przez naciecie enzymem restrykcyjnym i przywrócenie kodonów N-koncowych aminokwasów utraconych przy eliminacji presekwencji przez wleczenie fragmentów syntetycznego DNA, Jesli nie spelni to zadania, mozna zastosowac nastepujacy sposób* Mówiec zwiezle, fragment zawierajecy presekwencje odszczepia sie dokladnie przed punktem, w którym zaczyna sie kodon pierwszego aminokwasu dojrzalego polipeptydu, przez: 1/ konwersje dwuniciowego DNA do jednoniciowego w regionie otaczajecym ten punkt* 2/ hybrydyzacje jednoniciowego regionu utworzonego w stadium /a/ z komplementarnym primerem dlugosci jednoniciowego DNA* przy czym koniec 5# prinara jest polozony przeciwnie do nukleotydu przylegajacego do zedanego miejsca rozszczepienia* 3/ przywrócenie czesci drugiej nici wyeliminowanej w stadium /!/, umiejsco¬ wionej w kierunku 3#od primera, za pomoce reakcji z udzialem polime razy DNA w obecnosci tri- fosforanów nukleotydów* zawierajecych adenine, tymine* guanine i cytozyne oraz 4/ trawienie pozostalego jednoniciowego DNA wystajacego poza zedany punkt rozszczepienia* Krótkie fragmenty syntetycznego DNA konczace nic kodujece w stronie konca 3*, z sygnalem poczetku translacji ATG. mozna przyleczyc, np* przez leczenie wolnych konców, do powstajecego w wyniku obróbki genu dojrzalego interferonu okreslonego typu i gen wleczyc do plazmidu wykazujecego ekspresje pod kontrole promotora i poleczonego z nim miejsca przylecze- nia rybosomów* W sposób podobny do zastosowanego w czesci A wyzej, uksztaltowuje sie odpowiednio fragmenty genów LelF C i LelF D do bezposredniej ekspresji bakteryjnej* W strategie ekspresji tych dodatkowych interferonów leukocytów wchodzi w kazdym przypadku przywrócenie fragmentu HindIII-Sau3a o okolo 300 b*p*f zawierajecego uklad promotor-operator trp, miejsce przylacze¬ nia rybosomów* sygnal startu ATG i kodon cysteiny LelF A z pLelF A25* Dolecza sie do niego fragmenty genów z genów dodatkowych interferonów, kodujece odpowiednie sekwencje aminokwasów poza poczetkowe cysteine wspólne dla wszystkich* Kazdego otrzymanego plazmidu uzywa sie do transformowania E*coli K-12 szczep 294.W celu utworzenia odpowiednich genów stosuje sie nastepujece poleczenia: C* Wytwarzanie E*coli 294/pLeIF C trp 35 Izoluje sie z pLelF C nastepujece fragmenty: a/ Sau3a - Sau96 o 35 b*p*, b/ Sau96 - Pstl o 900 b*p*. c/ z pLelF A25 izoluje sie odpowiedni fragment HindIII-Sau3a o okolo 300 b*p* sposo¬ bem opisanym wyzej w czesci K/4/, d/ izoluje sie fragment jak opisano wyzej w czesci K/5/ o okolo 3600 b*p* Konstruowanie: 1/ leczy sie a/ i c/, rozszczepia Bglll, Hindlll i izoluje produkt o okolo 335 b*p.# 2/ leczy 6ie trzy fragmenty: 1/ ? b/ ? d/ i otrzymanego plazmidu uzywa sie do transformowania E*coli* Reprezentatywnym klonem otrzymanym w powyzszy sposób jest E*coli K-12 szczep 294/ pLelF C trp. 35* D. Wytwarzanie E*coli 294/pLeIF D trp 11 Z pLelF D izoluje sie nastepujece fragmenty: a/ Sau3a - AvaII o 35 b*p*t b/ AvaIII - Bglll o 150 b*p*, c/ Bglll - Pstl o okolo 700 b.p., z pLelF A25 izoluje sie nastepujecy fragment: d/ Hindlll - Sau3a o 300 b*p* Z pBR322 izoluje sie nastepujecy fragment: e/ Hindlll - Pstl o okolo 3600 b*p.148 261 17 Konstruowanie; 1/ leczy sie 1/ i b/, nacina Bglll i oczyszcza produkt 1/ o 185 b.p., 2/ leczy 1/ i d/, nacina Hindlll, Bglll i oczyszcza produkt /2/ o okolo 500 b.p., 3/ leczy sie 2/ + c/ ? e/ i uzywa otrzymanego plazmidu do transformowania E.coli.Reprezentatywnym klonem otrzymanym w powyzszy sposób jest E.coli K-12 szczep 294/ pLelF O trp 11.E. Wytwarzanie E.coli 294/pLeiIF trp 1 Fragment zawierajecy LelF F mozna przygotowac do bezposredniej ekspresji przez powtórzenie, dogodne z powodu calkowitej homologii, aminokwaów 1-13 LelF B i LelF C.Fragment a/ zawierajecy promotor trp z odpowiednio uksztaltowanymi koncami otrzymu¬ je sie z opisanego wyzej pHGH207, przez trawienie Pstl i Xbal, a nastepnie izolowanie fragmen¬ tu o okolo 1050 b.p. Drugi fragment b/ otrzymuje sie z wiekszego z fragmentów powstajecych w wyniku trawienia plazmidu pHKY 10 przez Pstl i Bglll.Fragment a/ zawiera okolo polowy genu kodujecego opornosc na ampicyline, a frag¬ ment b/ zawiera pozostale czesc tego genu i calkowity gen opornosci na tetracykline pozostawio¬ ny dla przyleglego promotora.Fragmenty a/ i b/ leczy sie za pomoce ligazy T4 i produkt traktuje Xbal i Bglll w celu wykluczenia dimeryzacji, tworzec fragment c/ zawierajecy uklad promotor - operator trp i geny opornosci na tetracykline i ampicyline.Fragment d/ o okolo 580 b.p. otrzymuje sie z pLelF przez trawienie AvaII i Bglll.Zawiera on kodony aminokwasów 14 - 166 LelF F.Fragment e/ o okolo 49 b.p. otrzymuje sie z pLelF B przez trawienie Xbal i AvaII.Fragment e/ koduje aminokwasy 1-13 LelF F.Trzy fragmenty c/, d/ i e/leczy sie razem w obecnosci ligazy T 4. Lepkie konce od¬ powiednich fragmentów se tego rodzaju, ze zlozony z nich plazmid przybiera postac koliste prawidlowo z umiejscowieniem genu opornosci na tetracykline pod kontrole ukladu promotor - ope¬ rator trp razem z genem dojrzalego LelF F tak, ze bakterie transformowane zedanym plazmidem mozna wyselekcjonowac na plytkach zawierajecych tetracykline. Reprezentatywnym klonem otrzy¬ manym w powyzszy sposób jest E.coli K-12 szczep 294/pLeIF F trp 1.F. Wytwarzanie E.coli 294/pLeIF H Calkowity gen LelF M mozna uksztaltowac w celu ekspresji dojrzalego interferonu leukocytów w nastepujecy sposób: 1/ Plazmid pLelF H poddaje sie trawieniu Haell i Rsal z izolowaniem fragmentu o 816 b.p. rozciegajecego sie od aminokwasu 10 sygnalowego peptydu do nie kodujecego regionu 3#. 2/ Fragment denaturuje sie i poddaje syntezie reperacyjnej z uzyciem polinerazy DNA I /fragment Klenova/ /Klenow i inni, Proc.Natl. Acad. Sci. USA, 65 - 168 /1970/ stosujec synte¬ tyczny dezoksynukleotydowy 5#- sATG TGT AAT CTG TCT. 3/ Powstaly produkt rozszczepia sie Sau3a i izoluje fragment o 452 b.p. reprezentu- jecy aminokwasy 1 - 150. 4/ Przez trawienie pLelF G za pomoce Sau3a i Pstl i izolowanie powstajacego fragmen¬ tu o 500 b.p. uzyskuje sie gen kodujecy aminokwasy od 150-go do konca kodujecej sekwencji. 5/ Fragmenty izolowane w stadium 3/ i 4/ leczy sie z utworzeniem fragmentu: 1 166 met cys asp stop ATG TGT ... —/ .... GAT TGA Pstl Sau3a kodujecego 166 aminokwasów LelF H. 6/ pLelF A trp 25 trawi sie Xbal, leczy wolne konce za pomoce polimerazy ONA 1 trawi produkt P6tl. Powstajecy duzy fragment mozna wyizolowac i poleczyc z produktem otrzymanym w stadium /5/ z utworzeniem plazmidu wykazujecego ekspresje, zdolnego po transformacji E.coli K-12 szczep 294 lub innej bakterii - gospodarza, do ekspresji dojrzalego LelF H.Przyklad III. Wytwarzanie szczepów E.coli zdolnych do wytwarzania LelF 113 A. Wytwarzanie E.coli 294/pLeIF I Faze A Charon 4A zbioru rekombinantów ludzkiego genomu skonstruowanego przez Lawna i innych. Celi, 15, 1157 /1978/, poddaje sie screeningowi pod wzgledem genów interferonu leuko¬ cytów metode opisane przez Lawna i innych /jak wyzej/ i Maniatisa i innych. Celi, 15, 687 /1978/.18 148 261 Próbke promieniotwórcze LelF pochodzece z cDNA klonu LelF A stosuje sie do scree- nlngu okolo 500 000 lysinek* Za pomoce tego screeningu otrzymano 6 klonów z genomem LelF.Po powtórnym screeningu i oczyszczeniu materialu z lysinek. Jeden z tych klonów, \ HLeIF2# wybrano do dalszych badan* Stosujac metody opisane wyzej do korzystnego izolowania dodatkowych klonów LelF z genomu ludzkiego mozna uzyc innych próbek • Moge byc one z kolei stosowane do wytwarzania Innych bialek lnterferonowych leukocytów* 1* Dokonuje sie podklonowania fragmentu EcoRI o 2 000 b.p. klonu A HLelF2 do miejs¬ ca EcoRI w pBR325* Powstajecy plazmid LelF rozszczepia sie i izoluje fragment o 2 000 b*p* Oezoksyoligonukleotyd dAATTCTGCAG /konwertor EcoRI - Pstl/ leczy sie z fragmentem EcoRI o 2 000 b*p. zawierajecego konce Pstl* Rozszczepia sie go Sau96 i izoluje fragment, który ma jeden koniec Pstl a jeden Sau 96, o 1 100 b.p* 2* Plazmid pLelF C trp 35 trawi sie Pstl 1 Xbal* Izoluje sie duzy fragment* 3* Maly fragment Xbal - Pstl z pLelF C trp 35 trawi sie Xbal 1 Sau96* Izoluje sie fragment Xbal - Sau96 o 40 b*p* 4* Fragmenty izolowane w stadiach /l/, /2/ i /3/ leczy sie z utworzeniem wykazuje- cego ekspresje plazmidu pLelF I trp.l* B* Wytwarzanie E.coli 294/pLeIF O 1. Plazmid pLelF 3 zawiera fragment Hindlll DNA genomu ludzkiego o 3,8 kilozesad, w którego sklad wchodzi sekwencja genu LelF 3* Z plazmidu tego izoluje sie fragment Ddel - Real o 760 b*p* 2* Plazmid pLelF B trp 7 rozszczepia sie Hindlll i Ddel i izoluje sie fragment Hindlll - Ddel o 340 b.p* 3* Plazmid rozszczepia sie Pstl, konce przeksztalca sie w wolne za pomoce polime- razy DHAI /fragment Klanowa/, a nastepnie trawi Hindlll* Izoluje sie duzy fragment o okolo 3600 b*p* 4* Fragmenty izolowane w stadiach /l/, /2/ i /3/ leczy sie z utworzeniem wykazuje- cego ekspresje plazmidu pLelF 3 trp 1* Zastrzezenia patentowe 1* Sposób wytwarzania drobnoustrojów zdolnych do wytwarzania dojrzalego interfe¬ ronu leukocytów ludzkich, zawierajecego 165 - 166 aminokwasów lub w przypadku gdy metionina Jest przyleczona do N-konca pierwszego aminokwasu tego interferonu, 166-167 aminokwasów oraz czesciowe sekwencje eminokwasowe Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Glu-Ile-Met-Arg-Ser,jak wskazano na fig*4 lub fig*9 w pozycji od 139 do 151, polegajecy na transformowaniu szczepu E*coli nosnikiem ekspresji i hodowli transformowanego szczepu, znamienny tym, ze konstruuje sie wektor E*coli zawierajecy promotor trp E.coli, operator i liderowe miejsce przylaczania rybosomów trp, izoluje sie gen kodujecy interferon leukocytów ludzkich ze zbioru kolonii bakteryjnych zawierajecych DNA komplementarny z indukowanym mRNA leukocytów ludzkich lub z Indukowanym mRNA linii komórkowej bedz ludzki genomowy DNA, wycina sie przez ciecie restrykcyjne gen kodujecy interferon leukocytów ludzkich i dokonuje sie insercji tak wyciete¬ go genu z wyeliminowane jakekolwiek sekwencje liderowe mogece zapobiegac drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich za promotorem trp E.coli, operatorem i liderowym miejscem przyleczenia rybosomów trp, otrzymanym nosnikiem ekspresji E.coli, zdolnym do ekspresji w E.coli wspomnianego dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich transformuje sie w znany sposób szczep E.coli i prowadzi sie hodowle transformowanego organizmu. 2* Sposów wedlug zastrz.l, znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu A leukocytów ludzkich /LelF A/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4. 3* Sposób wedlug zastrz.l, znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu B leukocytów ludzkich /LeiF B/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4.148 261 19 4. Sposób wedlug zastrz. lf znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu C leukocytów ludzkich /LelF C/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig .4. 5. Sposób wedlug zastrz.l, znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu O leukocytów ludzkich /LelF B/» o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4. 6. Sposób wedlug zastrzel, znamienny t y n, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu F leukocytów ludzkich /LelF F/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4. 7* Sposób wedlug zastrz.lf znamienny t y m, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu H leukocytów ludzkich /LelF H/t o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4. 8. Sposób wedlug zastrz.1, znamienny tym, ze jako wyciety gen sto¬ suje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu 1 leuko¬ cytów ludzkich /LelF I/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig* 9. 9. Sposób wedlug zastrz.1, znamienny tyn, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu J leukocytów ludzkich /LelF 3/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.9. 10* Sposób wedlug zastrz.1, albo 2, albo 3, albo 4, albo 5, albo 6, albo 7, albo 8, albo 9, znamienny tym, ze jako drobnoustrój E.coli stosuje sie E.coli K-12 szczep 294*Peptyd trypsynowy (T-1) Peptyd trypsynowy(T-13) Bialko Ala - Glu - Ile - Met - Arg —His~Glu-Met -Ile - Gin AA A CA AA mRNA 5' GCN GA AUC AUG GN 5' CA GA AUG AUC CA G U C U G U G A Komplemen- 3' CTT TAG TAC GC(T-1A) 3' GTA CTT TAC TA (T-13A) tarne primery T DNA C (T-1B) -»G (T-13B) —T-(T-1C) C -(T-13C) C T-(T-1D) —G C (T-13D) Fig! to148 261 Próbka 52P-T-1C 1 |345678 9 10 H 12 13 14 15 16 17^019AO 21 2225 24 25 • • • \ 26 27282930313255 543536 373839 ^ Próbka 32P-T-13C 12 5 4 5 6? R 91011 12 1514-15 16 17 1019 2fi£l 22 9Z 24 • *v«* «.• m a ? 25 26 27 28 29 30T1 32 55 34 35 36 37 38 39 ** Fig.2-60 •40 •20 ?l 20 aO LelF LelF LelF LelF LelF LelF LelF LelF H LelF A LelF B LelF LelF LelF LelF LelF LelF H LelF A LelF B LelF LelF LelF LelF LelF LelF H tgagcctaaaccttaggctcacccatttcaaccagtctagcagcatctgcaacatctacaatcgccttgacctttgctttactggtgcccctcctgctgc tactagctcagcagcatccgcaacatctacaatggccttgactttttatttaatggtggccctagtggtcc caaggttatccatctcaagtagcctagcaatatttgcaacatcccaatggccctgtccttttctttacttatgcccgtgctggtgc caaggttcagagtcacccatctcagcaagcccagaagtatctgcaaratctacgatggcctcgccctttgctttagtgatggtcctcgtcctgc acatcccaatggccctgtccttttctttactcatggccgtgctggtgc ccaaggttcagtgttacccctcatcaaccagcccagcagcatcttcgggattcccaatg(x:attgccctttgctttaatgatggccctggtggtgc 60 80 100 1-20 140 • I t • I t I I I • tcagctgcaagtcaagctgctctgtgggctgtgatctgcctcaaacccacagcctgggtagcaggaggaccttgatgctcctggcacagatgaggaaaat tcagctacaagtcattcagctctctgggctgtgatctgcctcagactcacagcctgggtaacaggagggccttgatactcctggcacaaatgcgaagaat tcagctacaaatccatctgttctctgggctgtgatctgcctcagacccacagcctcggtaataggagggccttcatactcctgggacaaatgggaagaat tcagctgcaagtcaagctgctctctgggctgtgatctccctgagacccacagcctggataacaggaggaccttgatgctcctggcacaaatgagcagaat ctgcctctgggctgtgatctgcctcaggcccacagcgtgggtaacaggagggccttcatactcctgacacaaatgacgagaat tcagctacaaatccatctgttctctgggctgtgatctgcctcagacccacagcctgggtaataggagggccttgatactcctggcacaaatgggaagaat tcagctgcaagtcaagctgctctctgggctgtaatctgtctcaaacccacagcctgaataacaggaggactttgatgctcatggcacaaatgagcagaat 160 180 20(< 220 240 I I » I I f I • I I CTCTCTTTTCTCCTGCTTGAAGGACAGACATGACTTTGGATTTCCCCAGGAGGAGTTT GGCAACCAGTTCCAAAAGGCTGAAACCATCCCTGTCCT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGACTTTGAATTCCCCCAGGAGGAGTTTGATGATAAACAGTTCCAGAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGATTTCCGAATCCCCCAGGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCAGAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTCCTCCTGTCTGATGGACAGACATGACTTTGGATTTCCCCAGGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCAGAAGGCTCCAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTTTTCTTACCTGAAGGACAGACATGACTTTGATTTTCCATCATCAGGTGTTTCATGGCAACCACTTCCAGAAGGTTCAAGCTATCTTCCTTTT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGACTTTGGATTCCCCCAAGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCACAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CATGACTTTGGATTTCCT CACGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCAGAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGACTTTGAATTTCCCCAGGAGGAATTTGATGGCAACCAGTTCCACAAAGCTCAAGCCATCTCTGTCCT 260 280 300 320 340 LeIF A CCATGAGATGATCCAGCAGATCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTGCTTGGGATGAGACCCTCCTAGACAAATTCTACACTGAACTCTAC LeIF B CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAACCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTGCTTTGGATGAGACGCTTCTAGATGAATTCTACATCCAACTTGAC LelF C CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAGAGGACTCATCTGCTGCTTGGGAACAGAGCCTCCTAGAAAAATTTTCCACTGAACTTTAC LelF D CCATGAGCTGATCCAGCAGATCTTCAACCTCTTTACCACAAAAGATTCArCTGCTGCTTGGGATGAGGACCTCCTAGACAAATTCTGCACCGAACTCTAC LelF E CCATGAGATGATGCAGCAGACCTTCAACCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGATACTTGCGATGAGACCCTTTTAGACAAAfCCTACACTGAAGTTTAC LelF F CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTACTTGGGAACAGAGCCTCCTAGAAAAATTTTCCACTGAACTTAAC LelF G CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTACTTGGGATGAGACACTTCTAGACAAATTCTACACTGAACTTTAC LelF H CCATGAGArGATGCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGAACTCArCTGCTGCTTGGGATGAGACCCTCCTAGAAAAATTCTACATTGAACTTTTC Fig. 3148 261 o t-b* OOOOOOOO <<<<<<<< HHHHHHHH < < << o ' < < %i$ o ooo <<<<<<<< .oooooooo HHHHHHHH OOOOOOOO OOOOOOOO oooooo OOOOOOOO OOOHOHOO O HOOOOOOO cm- H^HHHHHH OOOOOOHO OOOOOOOO H H H H p l- (_ h OOOOOOOO <<<<<<<< oooooooo oooooooo «oooooooo OOHHHHHH <<<<<<<< OOOOOOOO pHHHOHHH <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH O OOOOOOOO O- OOOOOOHO ^ OOOOOOOO oooooooo ht*+* b^b^b^b^b^ OOOOOOOO O O O < O O O O <<<<<<<< oooooooo <<<<<<<< -OH<0<<<< < oooooooo b* b* 1-t" t-h1 b* h« oooooooo oooo oooooooo ooo OOHOHHHH O HHH 00- OOOOOOOO O 0<000000 o<<<<<<< oooo oooooooo <<<<<<<< OOOOHOOO h* < t* i- b+ *- i- b« -OHOOOOOO HOHHHHHH OHOOOO<0' HOHHf-OHH OHOOOOOO b^Ub^^b^Hb^b- O O < O O O O O OHOOOOOO OOOOOOOO o <<<<<<<< *- <<<<<<<< c*» OOOOOOOO oooooooo OOOHO<00 oooooooo <<<<<<<< oooooooo <<<<<<<< •<<<<<<<< OJO O O O O O O b^b^b^b^h*b^b^h* oo o o o oo< oo <<<<<<<< oooooooo oooooooo <<<<<<<< oooooooo p o CM- o o- o 00- o <<<< < o < O H O O O < O O <<<<< <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH 0 HHHHHHhl- Hb^b^b-b-b-^^b^ oooooooo ' f_ H H H H H H . o o o o o o o HHHHHHHH HHOOHHHH HOOOOOOO OOOOOOOO H HH HHHH H <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< oooooooo HHHHHHHH <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH <<<<<<<< <<<<<<<< <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< OOOOOOOO OOOOOOOO <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< oooooooo b^b^b^b^b-b^b^b^ oooooooo oooooooo oooooooo <<<<<<<< oooooooo oooooooo oooooooo OOOOOH<0 oooooooo OOOOHOOO oooooooo b*b*b HHH HH HHH oooooooo OHOOOOOO OOOOOOOO oooooooo <<<<<<<< OOOOHOOO <<<<<<<< HHHHHHHH < < < <0 < < < <<<<<<<< <<<<<<<< oooooooo < <<<<<<<< oooooooo <<<<<<<< oooo <<<<<< < < < < < < < < o o < o o oo o HHHHHHHH oooooooo HHHHHHHH <<<<<<<< HHHHHHHH 0 HHHHHHHH OOOOOOOO HHHHHHOH OOOOOOOO <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH <<<<<<<< <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< <<<<<<<< <<<&<<<< OOOOOOOO OOOOHOHO HHHHHHHH O ^ - O CM- o o- o co- o H 0< H HO OH < OH < O O H H O O < OOHO<00 0 Uk-b^b^<(JCU OOOOOHHH H H H H H O O H OHHH HOO <<< O HOHH <<< HOOO< b* b< t- b* U b* hb-h HOOOHHOO 0< <0 O O < < OOOOH<00 <<<< O H O O O < O O HOHHHOHH O H O O < O H O OOHOOHHH <<<< OOHOH < O O O O H O < O O H 0< H O O O H < O O < "t < < H O < < HHHH< O < < < O H O < 0< b'hhb-<<^b* HOOOOHOO <<< OOOOH<00 H < H H H O h H HHHHHHHH <<<< oooho^coo HHHH H O O O < O O O H H O H < H H H HHHHOOHH <<<< 000<0<00 HHHOHOHH <<<< <<<<<<<< < O O O < O < O O OOOOOOOO H OH H H OH H <<<< O O O O O < O O <<<<<0 <<<<<<<< ooooo H HHHHHHHH OOOOOHOO OOOOOHOO HHHHHOHH OOOOOOOO <0 <<<<<<<< <0 obbkbbbkj hIhIhIhIhIhIhIhI <<<<<<<< oooooooo oooooooo <<<<<<<< <<<<<<<< HHOOOOOO OOOOOOOO <<<<<<<< o <<<<<<<< E P {-, h h i-, H h . <<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< <<<<<<<< <<<<<<<< o< <<< <<<<<<<< oooooooo OOOOOHOO OOOOOHOO < ad o q w u, o ac J ^?JJJ fcuj «r oo o o tij U4 o ac «) « v a< u i « ii JJJ J ^UJJ V V V l' i ti V 41148 261 o O CM- © O- o 00- o *¦ HO OHHHOO<0 < OH<<< O O OH O OO O OHOH<0<< <00 «:o< H<0 H O O H O O O < OHHHOOHO HHOH<<00 OOH OH OOH H <0 UU< HHHHHHHO H<<<<<0< < O H U O O H H H <0^b-\r{r'H 0 HOO<00<0 HOOHO < OH < 0<0<0<<0 00 h^b^ <00 << HO HO < HOOHOOOH OHH<00 0H< O H O H H H O O PL PL PL

Claims (10)

1.Zastrzezenia patentowe 1. * Sposób wytwarzania drobnoustrojów zdolnych do wytwarzania dojrzalego interfe¬ ronu leukocytów ludzkich, zawierajecego 165 - 166 aminokwasów lub w przypadku gdy metionina Jest przyleczona do N-konca pierwszego aminokwasu tego interferonu, 166-167 aminokwasów oraz czesciowe sekwencje eminokwasowe Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Glu-Ile-Met-Arg-Ser,jak wskazano na fig*4 lub fig*9 w pozycji od 139 do 151, polegajecy na transformowaniu szczepu E*coli nosnikiem ekspresji i hodowli transformowanego szczepu, znamienny tym, ze konstruuje sie wektor E*coli zawierajecy promotor trp E.coli, operator i liderowe miejsce przylaczania rybosomów trp, izoluje sie gen kodujecy interferon leukocytów ludzkich ze zbioru kolonii bakteryjnych zawierajecych DNA komplementarny z indukowanym mRNA leukocytów ludzkich lub z Indukowanym mRNA linii komórkowej bedz ludzki genomowy DNA, wycina sie przez ciecie restrykcyjne gen kodujecy interferon leukocytów ludzkich i dokonuje sie insercji tak wyciete¬ go genu z wyeliminowane jakekolwiek sekwencje liderowe mogece zapobiegac drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich za promotorem trp E.coli, operatorem i liderowym miejscem przyleczenia rybosomów trp, otrzymanym nosnikiem ekspresji E.coli, zdolnym do ekspresji w E.coli wspomnianego dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich transformuje sie w znany sposób szczep E.coli i prowadzi sie hodowle transformowanego organizmu.
2. * Sposów wedlug zastrz.l, znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu A leukocytów ludzkich /LelF A/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4.
3. * Sposób wedlug zastrz.l, znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu B leukocytów ludzkich /LeiF B/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.
4.148 261 194. Sposób wedlug zastrz. lf znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu C leukocytów ludzkich /LelF C/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig .
5. Sposób wedlug zastrz.l, znamienny tym, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu O leukocytów ludzkich /LelF B/» o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4.
6. Sposób wedlug zastrzel, znamienny t y n, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu F leukocytów ludzkich /LelF F/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4.
7. * Sposób wedlug zastrz.lf znamienny t y m, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu H leukocytów ludzkich /LelF H/t o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4.
8. Sposób wedlug zastrz.1, znamienny tym, ze jako wyciety gen sto¬ suje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu 1 leuko¬ cytów ludzkich /LelF I/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig* 9.
9. Sposób wedlug zastrz.1, znamienny tyn, ze jako wyciety gen stosuje sie gen zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu J leukocytów ludzkich /LelF 3/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.
10. * Sposób wedlug zastrz.1, albo 2, albo 3, albo 4, albo 5, albo 6, albo 7, albo 8, albo 9, znamienny tym, ze jako drobnoustrój E.coli stosuje sie E.coli K-12 szczep 294*Peptyd trypsynowy (T-1) Peptyd trypsynowy(T-13) Bialko Ala - Glu - Ile - Met - Arg —His~Glu-Met -Ile - Gin AA A CA AA mRNA 5' GCN GA AUC AUG GN 5' CA GA AUG AUC CA G U C U G U G A Komplemen- 3' CTT TAG TAC GC(T-1A) 3' GTA CTT TAC TA (T-13A) tarne primery T DNA C (T-1B) -»G (T-13B) —T-(T-1C) C -(T-13C) C T-(T-1D) —G C (T-13D) Fig! to148 261 Próbka 52P-T-1C 1 |345678 9 10 H 12 13 14 15 16 17^019AO 21 2225 24 25 • • • \ 26 27282930313255 543536 373839 ^ Próbka 32P-T-13C 12 5 4 5 6? R 91011 12 1514-15 16 17 1019 2fi£l 22 9Z 24 • *v«* «.• m a ? 25 26 27 28 29 30T1 32 55 34 35 36 37 38 39 ** Fig.2-60 •40 •20 ?l 20 aO LelF LelF LelF LelF LelF LelF LelF LelF H LelF A LelF B LelF LelF LelF LelF LelF LelF H LelF A LelF B LelF LelF LelF LelF LelF LelF H tgagcctaaaccttaggctcacccatttcaaccagtctagcagcatctgcaacatctacaatcgccttgacctttgctttactggtgcccctcctgctgc tactagctcagcagcatccgcaacatctacaatggccttgactttttatttaatggtggccctagtggtcc caaggttatccatctcaagtagcctagcaatatttgcaacatcccaatggccctgtccttttctttacttatgcccgtgctggtgc caaggttcagagtcacccatctcagcaagcccagaagtatctgcaaratctacgatggcctcgccctttgctttagtgatggtcctcgtcctgc acatcccaatggccctgtccttttctttactcatggccgtgctggtgc ccaaggttcagtgttacccctcatcaaccagcccagcagcatcttcgggattcccaatg(x:attgccctttgctttaatgatggccctggtggtgc 60 80 100 1-20 140 • I t • I t I I I • tcagctgcaagtcaagctgctctgtgggctgtgatctgcctcaaacccacagcctgggtagcaggaggaccttgatgctcctggcacagatgaggaaaat tcagctacaagtcattcagctctctgggctgtgatctgcctcagactcacagcctgggtaacaggagggccttgatactcctggcacaaatgcgaagaat tcagctacaaatccatctgttctctgggctgtgatctgcctcagacccacagcctcggtaataggagggccttcatactcctgggacaaatgggaagaat tcagctgcaagtcaagctgctctctgggctgtgatctccctgagacccacagcctggataacaggaggaccttgatgctcctggcacaaatgagcagaat ctgcctctgggctgtgatctgcctcaggcccacagcgtgggtaacaggagggccttcatactcctgacacaaatgacgagaat tcagctacaaatccatctgttctctgggctgtgatctgcctcagacccacagcctgggtaataggagggccttgatactcctggcacaaatgggaagaat tcagctgcaagtcaagctgctctctgggctgtaatctgtctcaaacccacagcctgaataacaggaggactttgatgctcatggcacaaatgagcagaat 160 180 20(< 220 240 I I » I I f I • I I CTCTCTTTTCTCCTGCTTGAAGGACAGACATGACTTTGGATTTCCCCAGGAGGAGTTT GGCAACCAGTTCCAAAAGGCTGAAACCATCCCTGTCCT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGACTTTGAATTCCCCCAGGAGGAGTTTGATGATAAACAGTTCCAGAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGATTTCCGAATCCCCCAGGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCAGAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTCCTCCTGTCTGATGGACAGACATGACTTTGGATTTCCCCAGGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCAGAAGGCTCCAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTTTTCTTACCTGAAGGACAGACATGACTTTGATTTTCCATCATCAGGTGTTTCATGGCAACCACTTCCAGAAGGTTCAAGCTATCTTCCTTTT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGACTTTGGATTCCCCCAAGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCACAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CATGACTTTGGATTTCCT CACGAGGAGTTTGATGGCAACCAGTTCCAGAAGGCTCAAGCCATCTCTGTCCT CTCTCCTTTCTCCTGCCTGAAGGACAGACATGACTTTGAATTTCCCCAGGAGGAATTTGATGGCAACCAGTTCCACAAAGCTCAAGCCATCTCTGTCCT 260 280 300 320 340 LeIF A CCATGAGATGATCCAGCAGATCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTGCTTGGGATGAGACCCTCCTAGACAAATTCTACACTGAACTCTAC LeIF B CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAACCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTGCTTTGGATGAGACGCTTCTAGATGAATTCTACATCCAACTTGAC LelF C CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAGAGGACTCATCTGCTGCTTGGGAACAGAGCCTCCTAGAAAAATTTTCCACTGAACTTTAC LelF D CCATGAGCTGATCCAGCAGATCTTCAACCTCTTTACCACAAAAGATTCArCTGCTGCTTGGGATGAGGACCTCCTAGACAAATTCTGCACCGAACTCTAC LelF E CCATGAGATGATGCAGCAGACCTTCAACCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGATACTTGCGATGAGACCCTTTTAGACAAAfCCTACACTGAAGTTTAC LelF F CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTACTTGGGAACAGAGCCTCCTAGAAAAATTTTCCACTGAACTTAAC LelF G CCATGAGATGATCCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGGACTCATCTGCTACTTGGGATGAGACACTTCTAGACAAATTCTACACTGAACTTTAC LelF H CCATGAGArGATGCAGCAGACCTTCAATCTCTTCAGCACAAAGAACTCArCTGCTGCTTGGGATGAGACCCTCCTAGAAAAATTCTACATTGAACTTTTC Fig. 3148 261 o t-b* OOOOOOOO <<<<<<<< HHHHHHHH < < << o ' < < %i$ o ooo <<<<<<<< .oooooooo HHHHHHHH OOOOOOOO OOOOOOOO oooooo OOOOOOOO OOOHOHOO O HOOOOOOO cm- H^HHHHHH OOOOOOHO OOOOOOOO H H H H p l- (_ h OOOOOOOO <<<<<<<< oooooooo oooooooo «oooooooo OOHHHHHH <<<<<<<< OOOOOOOO pHHHOHHH <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH O OOOOOOOO O- OOOOOOHO ^ OOOOOOOO oooooooo ht*+* b^b^b^b^b^ OOOOOOOO O O O < O O O O <<<<<<<< oooooooo <<<<<<<< -OH<0<<<< < oooooooo b* b* 1-t" t-h1 b* h« oooooooo oooo oooooooo ooo OOHOHHHH O HHH 00- OOOOOOOO O 0<000000 o<<<<<<< oooo oooooooo <<<<<<<< OOOOHOOO h* < t* i- b+ *- i- b« -OHOOOOOO HOHHHHHH OHOOOO<0' HOHHf-OHH OHOOOOOO b^Ub^^b^Hb^b- O O < O O O O O OHOOOOOO OOOOOOOO o <<<<<<<< *- <<<<<<<< c*» OOOOOOOO oooooooo OOOHO<00 oooooooo <<<<<<<< oooooooo <<<<<<<< •<<<<<<<< OJO O O O O O O b^b^b^b^h*b^b^h* oo o o o oo< oo <<<<<<<< oooooooo oooooooo <<<<<<<< oooooooo p o CM- o o- o 00- o <<<< < o < O H O O O < O O <<<<< <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH 0 HHHHHHhl- Hb^b^b-b-b-^^b^ oooooooo ' f_ H H H H H H . o o o o o o o HHHHHHHH HHOOHHHH HOOOOOOO OOOOOOOO H HH HHHH H <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< oooooooo HHHHHHHH <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH <<<<<<<< <<<<<<<< <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< OOOOOOOO OOOOOOOO <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< oooooooo b^b^b^b^b-b^b^b^ oooooooo oooooooo oooooooo <<<<<<<< oooooooo oooooooo oooooooo OOOOOH<0 oooooooo OOOOHOOO oooooooo b*b*b HHH HH HHH oooooooo OHOOOOOO OOOOOOOO oooooooo <<<<<<<< OOOOHOOO <<<<<<<< HHHHHHHH < < < <0 < < < <<<<<<<< <<<<<<<< oooooooo < <<<<<<<< oooooooo <<<<<<<< oooo <<<<<< < < < < < < < < o o < o o oo o HHHHHHHH oooooooo HHHHHHHH <<<<<<<< HHHHHHHH 0 HHHHHHHH OOOOOOOO HHHHHHOH OOOOOOOO <<<<<<<< OOOOOOOO HHHHHHHH <<<<<<<< <<<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< <<<<<<<< <<<&<<<< OOOOOOOO OOOOHOHO HHHHHHHH O ^ - O CM- o o- o co- o H 0< H HO OH < OH < O O H H O O < OOHO<00 0 Uk-b^b^<(JCU OOOOOHHH H H H H H O O H OHHH HOO <<< O HOHH <<< HOOO< b* b< t- b* U b* hb-h HOOOHHOO 0< <0 O O < < OOOOH<00 <<<< O H O O O < O O HOHHHOHH O H O O < O H O OOHOOHHH <<<< OOHOH < O O O O H O < O O H 0< H O O O H < O O < "t < < H O < < HHHH< O < < < O H O < 0< b'hhb-<<^b* HOOOOHOO <<< OOOOH<00 H < H H H O h H HHHHHHHH <<<< oooho^coo HHHH H O O O < O O O H H O H < H H H HHHHOOHH <<<< 000<0<00 HHHOHOHH <<<< <<<<<<<< < O O O < O < O O OOOOOOOO H OH H H OH H <<<< O O O O O < O O <<<<<0 <<<<<<<< ooooo H HHHHHHHH OOOOOHOO OOOOOHOO HHHHHOHH OOOOOOOO <0 <<<<<<<< <0 obbkbbbkj hIhIhIhIhIhIhIhI <<<<<<<< oooooooo oooooooo <<<<<<<< <<<<<<<< HHOOOOOO OOOOOOOO <<<<<<<< o <<<<<<<< E P {-, h h i-, H h . <<<<<<< OOOOOOOO <<<<<<<< <<<<<<<< <<<<<<<< o< <<< <<<<<<<< oooooooo OOOOOHOO OOOOOHOO < ad o q w u, o ac J ^?JJJ fcuj «r oo o o tij U4 o ac «) « v a< u i « ii JJJ J ^UJJ V V V l' i ti V 41148 261 o O CM- © O- o 00- o *¦ HO OHHHOO<0 < OH<<< O O OH O OO O OHOH<0<< <00 «:o< H<0 H O O H O O O < OHHHOOHO HHOH<<00 OOH OH OOH H <0 UU< HHHHHHHO H<<<<<0< < O H U O O H H H <0^b-\r{r'H 0 HOO<00<0 HOOHO < OH < 0<0<0<<0 00 h^b^ <00 << HO HO < HOOHOOOH OHH<00 0H< O H O H H H O O PL PL PL
PL1981255773A 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes PL148261B1 (en)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US16498680A 1980-07-01 1980-07-01
US18490980A 1980-09-08 1980-09-08
US20557880A 1980-11-10 1980-11-10
US06/256,204 US6610830B1 (en) 1980-07-01 1981-04-21 Microbial production of mature human leukocyte interferons

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL148261B1 true PL148261B1 (en) 1989-09-30

Family

ID=27496622

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981255774A PL148276B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining an expression carrier capable to express a mature interferone of human leucocytes in a transformed strain of e. coli
PL1981255773A PL148261B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes
PL1981231940A PL148260B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining mature interferon of human leucocytes

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981255774A PL148276B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining an expression carrier capable to express a mature interferone of human leucocytes in a transformed strain of e. coli

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981231940A PL148260B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining mature interferon of human leucocytes

Country Status (36)

Country Link
EP (2) EP0043980B1 (pl)
AR (1) AR242833A1 (pl)
AT (3) ATE79901T1 (pl)
AU (1) AU552004B2 (pl)
BG (1) BG42189A3 (pl)
BR (1) BR8104189A (pl)
CH (2) CH651308A5 (pl)
CS (1) CS273152B2 (pl)
DD (3) DD202307A5 (pl)
DE (3) DE3125706C2 (pl)
DK (1) DK173543B1 (pl)
DZ (1) DZ312A1 (pl)
ES (1) ES8207514A1 (pl)
FI (1) FI82712C (pl)
FR (1) FR2486098B1 (pl)
GB (1) GB2079291B (pl)
GE (1) GEP19960519B (pl)
GR (1) GR75714B (pl)
HK (1) HK49285A (pl)
HU (1) HU196457B (pl)
IE (1) IE49255B1 (pl)
IT (1) IT1137272B (pl)
KE (1) KE3534A (pl)
LU (1) LU83461A1 (pl)
MC (1) MC1396A1 (pl)
MY (1) MY8700711A (pl)
NL (1) NL8103151A (pl)
NO (1) NO159392C (pl)
NZ (1) NZ197572A (pl)
PH (1) PH18036A (pl)
PL (3) PL148276B1 (pl)
PT (1) PT73289B (pl)
RO (1) RO87590A (pl)
SE (2) SE8104093L (pl)
SU (1) SU1414319A3 (pl)
YU (1) YU47700B (pl)

Families Citing this family (52)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ZA811368B (en) * 1980-03-24 1982-04-28 Genentech Inc Bacterial polypedtide expression employing tryptophan promoter-operator
AU564690B2 (en) 1980-04-03 1987-08-20 Biogen Idec Ma Inc. Process for producing human fibroblast interferon-like polypeptides using recombinant dna
DE3176011D1 (en) * 1980-06-12 1987-04-23 Japan Found Cancer Plasmid
DK489481A (da) * 1980-11-10 1982-05-11 Searle & Co Plasmidvektor og frmgangsmaade til fremstilling deraf
NZ199722A (en) * 1981-02-25 1985-12-13 Genentech Inc Dna transfer vector for expression of exogenous polypeptide in yeast;transformed yeast strain
EP0085693A1 (en) * 1981-08-14 1983-08-17 A/S Alfred Benzon Subjects relating to human inteferon-alpha subtype proteins and corresponding antibodies
JPS58110548A (ja) * 1981-12-24 1983-07-01 Asahi Chem Ind Co Ltd 新規な生理活性ペプチド
US5098703A (en) * 1982-01-15 1992-03-24 Cetus Corporation Interferon-alpha 76
US4975276A (en) * 1982-01-15 1990-12-04 Cetus Corporation Interferon-alpha 54
US4973479A (en) * 1982-01-15 1990-11-27 Cetus Corporation Interferon-α61
IE54592B1 (en) * 1982-03-08 1989-12-06 Genentech Inc Anumal interferons, processes involved in their production, compositions containing them, dna sequences coding therefor and espression vehicles containing such sequences and cells transformed thereby
US6432677B1 (en) 1982-03-08 2002-08-13 Genentech, Inc. Non-human animal interferons
US5827694A (en) * 1982-03-08 1998-10-27 Genentech, Inc. DNA encoding non-human animal interferons, vectors and hosts therefor, and recombinant production of IFN polypeptides
US4775622A (en) * 1982-03-08 1988-10-04 Genentech, Inc. Expression, processing and secretion of heterologous protein by yeast
EP0088994B1 (en) * 1982-03-15 1991-06-19 Schering Corporation Hybrid dna, binding composition prepared thereby and processes therefor
US4748233A (en) * 1982-03-23 1988-05-31 Bristol-Myers Company Alpha-interferon Gx-1
US4695543A (en) * 1982-03-23 1987-09-22 Bristol-Myers Company Alpha Interferon GX-1
CA1210714A (en) * 1982-03-23 1986-09-02 Alan Sloma .alpha.-INTERFERON GX-1
US6936694B1 (en) 1982-05-06 2005-08-30 Intermune, Inc. Manufacture and expression of large structural genes
US5831023A (en) * 1982-11-01 1998-11-03 Genentech, Inc. Recombinant animal interferon polypeptides
WO1984003300A1 (fr) * 1983-02-24 1984-08-30 Inst Organicheskogo Sinteza Ak Interferon n humain leucocytaire et son procede d'obtention dans des cellules bacteriennes
EP0165942A1 (en) * 1983-12-23 1986-01-02 Monash University PRODUCTION OF HUMAN INTERFERON-$g(a)
SU1364343A1 (ru) * 1984-07-13 1988-01-07 Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Способ получени человеческого лейкоцитарного интерферона альфа-2
IL76360A0 (en) 1984-09-26 1986-01-31 Takeda Chemical Industries Ltd Mutual separation of proteins
WO1986002068A1 (fr) * 1984-09-26 1986-04-10 Takeda Chemical Industries, Ltd. Separation mutuelle de proteines
DE3515336C2 (de) * 1985-04-27 1994-01-20 Boehringer Ingelheim Int Verfahren zur Herstellung und Reinigung von â-Interferon
US5196323A (en) * 1985-04-27 1993-03-23 Boehringer Ingelheim International Gmbh Process for preparing and purifying alpha-interferon
JP2514950B2 (ja) * 1986-03-10 1996-07-10 エフ・ホフマン―ラ ロシユ アーゲー 化学修飾蛋白質,その製造法および中間体
JPS6463395A (en) * 1987-05-04 1989-03-09 Oncogen Oncostatin m and novel composition having antitumor activity
CA1309044C (en) * 1987-11-09 1992-10-20 Toshiya Takano Method of producing foreign gene products
GB8813032D0 (en) * 1988-06-02 1988-07-06 Boehringer Ingelheim Int Antiviral pharmaceutical composition
WO1991003251A1 (en) * 1989-09-08 1991-03-21 California Institute Of Biological Research Cr2 ligand compositions and methods for modulating immune cell functions
DE3932311A1 (de) * 1989-09-28 1991-04-11 Boehringer Ingelheim Int Verfahren zur reinigung von beta-interferon
PT741577E (pt) * 1994-03-07 2003-03-31 Imperial College Utilizacao do subtipo de interferao alfa 8 na preparacao de medicamentos para tratar infeccoes virais do figado
ATE205256T1 (de) * 1994-04-09 2001-09-15 Hoffmann La Roche Verfahren zur herstellung von alpha-interferon
GB9609932D0 (en) * 1996-05-13 1996-07-17 Hoffmann La Roche Use of IL-12 and IFN alpha for the treatment of infectious diseases
US20030190307A1 (en) 1996-12-24 2003-10-09 Biogen, Inc. Stable liquid interferon formulations
WO1999029863A1 (en) 1997-12-08 1999-06-17 Genentech, Inc. Human interferon-epsilon: a type i interferon
ZA9811070B (en) 1997-12-08 2000-07-03 Genentech Inc Type I interferons.
PT2158923E (pt) 1998-08-06 2013-06-04 Univ Duke Conjugados de peg-urato oxidase e sua utilização
US6783965B1 (en) 2000-02-10 2004-08-31 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Aggregate-free urate oxidase for preparation of non-immunogenic polymer conjugates
US6268178B1 (en) 1999-05-25 2001-07-31 Phage Biotechnology Corp. Phage-dependent super-production of biologically active protein and peptides
EP2292652A2 (en) * 2000-11-03 2011-03-09 Pestka Biomedical Laboratories, Inc. Interferons uses and compositions related thereto
FR2822845B1 (fr) 2001-03-30 2003-12-12 Genodyssee Nouveaux polynucleotides comportant des polymorphismes de type snp fonctionnels dans la sequence nucleotidique du gene ifn-alpha-21 ainsi que de nouveaux polypeptides codes par ces polynucleotides et leurs utilisations therapeutiques
FR2823220B1 (fr) 2001-04-04 2003-12-12 Genodyssee Nouveaux polynucleotides et polypeptides de l'erythropoietine (epo)
FR2825716B1 (fr) 2001-06-11 2004-09-24 Genodyssee Nouveaux polynucleotides et polypeptides de l'ifn alpha 7
KR20080009111A (ko) 2005-04-11 2008-01-24 새비언트 파마수티컬즈 인크. 유레이트 옥시다아제의 변이형 및 이의 용도
KR20100103595A (ko) * 2008-01-18 2010-09-27 에프. 호프만-라 로슈 아게 비-글라이코실화된 단백질의 정제
AU2010265964B2 (en) 2009-06-25 2014-09-18 Horizon Therapeutics Usa, Inc. Methods and kits for predicting infusion reaction risk and antibody-mediated loss of response by monitoring serum uric acid during PEGylated uricase therapy
US20200237881A1 (en) 2019-01-30 2020-07-30 Horizon Pharma Rheumatology Llc Reducing immunogenicity to pegloticase
WO2018087345A1 (en) 2016-11-14 2018-05-17 F. Hoffmann-La Roche Ag COMBINATION THERAPY OF AN HBsAg INHIBITOR, A NUCLEOS(T)IDE ANALOGUE AND AN INTERFERON
US12269875B2 (en) 2023-08-03 2025-04-08 Jeff R. Peterson Gout flare prevention methods using IL-1BETA blockers

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IN150740B (pl) * 1978-11-24 1982-12-04 Hoffmann La Roche
FI77877C (fi) * 1979-04-20 1989-05-10 Technobiotic Ltd Foerfarande foer framstaellning och rening av human le-formig interferonprotein.
GR73557B (pl) * 1980-01-08 1984-03-15 Biogen Inc
DE3005897A1 (de) * 1980-02-16 1981-09-03 Hoechst Ag, 6000 Frankfurt Genprodukt eines hoeheren organismus aus einem dieses gen enhtaltenden mikroorganismus
DE3176011D1 (en) * 1980-06-12 1987-04-23 Japan Found Cancer Plasmid
ES506955A0 (es) * 1980-11-10 1983-02-01 Genentech Inc Un procedimiento para producir un polipeptido antiviral.
FI64813C (fi) * 1980-12-31 1984-01-10 Ilkka Antero Palva Foerfarande foer producering av ett utvalt aeggviteaemne och vid foerfarandet anvaenda rekombinantplasmidvektorer
EP0062971B1 (en) * 1981-03-27 1990-03-07 Imperial Chemical Industries Plc Genetically modified microorganisms

Also Published As

Publication number Publication date
PT73289A (en) 1981-07-01
DE3176448D1 (en) 1987-10-22
ATA290981A (de) 1985-09-15
BG42189A3 (en) 1987-10-15
DK291081A (da) 1982-01-02
IT1137272B (it) 1986-09-03
FR2486098A1 (fr) 1982-01-08
FI82712B (fi) 1990-12-31
CS273152B2 (en) 1991-03-12
YU162281A (en) 1984-02-29
AR242833A1 (es) 1993-05-31
PL148276B1 (en) 1989-09-30
IE811463L (en) 1982-01-01
NO812247L (no) 1982-01-04
DE3177288T3 (de) 2000-03-16
CS503781A2 (en) 1990-07-12
ES503528A0 (es) 1982-10-01
NO159392C (no) 1988-12-21
AU552004B2 (en) 1986-05-22
EP0211148A1 (en) 1987-02-25
MY8700711A (en) 1987-12-31
DZ312A1 (fr) 2004-09-13
DE3125706A1 (de) 1982-04-15
KE3534A (en) 1985-06-07
GR75714B (pl) 1984-08-02
NZ197572A (en) 1985-07-31
DE3125706C2 (de) 1995-05-24
FI82712C (fi) 1991-04-10
IT8122682A0 (it) 1981-07-01
DD210304A5 (de) 1984-06-06
AU7246281A (en) 1982-01-07
YU47700B (sh) 1996-01-08
EP0211148B1 (en) 1992-08-26
NO159392B (no) 1988-09-12
SU1414319A3 (ru) 1988-07-30
PT73289B (en) 1983-05-11
DD202307A5 (de) 1983-09-07
ATE29727T1 (de) 1987-10-15
ATE79901T1 (de) 1992-09-15
FI812067L (fi) 1982-01-02
GEP19960519B (en) 1996-07-02
SE8104093L (sv) 1982-01-02
CH651308A5 (de) 1985-09-13
LU83461A1 (de) 1983-04-06
SE465223B (sv) 1991-08-12
CH657141A5 (de) 1986-08-15
PH18036A (en) 1985-03-06
EP0043980A2 (en) 1982-01-20
SE465223C5 (sv) 1998-02-10
GB2079291A (en) 1982-01-20
AT380272B (de) 1986-05-12
DK173543B1 (da) 2001-02-05
PL148260B1 (en) 1989-09-30
BR8104189A (pt) 1982-03-16
DE3177288T2 (de) 1992-12-10
ES8207514A1 (es) 1982-10-01
IE49255B1 (en) 1985-09-04
EP0211148B2 (en) 1999-11-24
EP0043980A3 (en) 1982-09-15
DE3177288D1 (de) 1992-10-01
DD210305A5 (de) 1984-06-06
EP0043980B1 (en) 1987-09-16
GB2079291B (en) 1984-06-13
HK49285A (en) 1985-07-05
FR2486098B1 (fr) 1985-12-27
NL8103151A (nl) 1982-02-01
PL231940A1 (en) 1983-07-18
HU196457B (en) 1988-11-28
RO87590A (ro) 1986-07-30
MC1396A1 (fr) 1982-04-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL148261B1 (en) Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes
CA1341583C (en) Interferons and process for their preparation
CA1341569C (en) Microbial production of human fibroblast interferon
US4456748A (en) Hybrid human leukocyte interferons
US4678751A (en) Hybrid human leukocyte interferons
DK173590B1 (da) Fremgangsmåde til fremstilling af et antiviralt polypeptid og at et dobbeltstrenget DNA, der omfatter en sekvens, der koder
US4801685A (en) Microbial production of mature human leukocyte interferon K and L
JPS6363199B2 (pl)
US4810645A (en) Microbial production of mature human leukocyte interferon K and L
KR870000510B1 (ko) 형질전환된 미생물의 제조방법
SE453512B (sv) Menniskoleukocytinterferon n och forfarande for framstellning derav i bakterieceller
FI82713B (fi) Plasmid, som foermaor expressera humant moget leukocytinterferon, foerfarande foer dess framstaellning samt dess anvaendning vid framstaellning av humant leukocytinterferon.
KR870000511B1 (ko) 발현 비히클의 제조방법
IL63197A (en) Intraferons for mature human oocytes, their preparation and preparations containing them
CS273182B2 (en) Method of expressive vector production capable to give mature human leucocytic interferon in transformed strain of escherichia coli by means of expression
NO164178B (no) Plasmid som koder for et ferdigutviklet human leukocyttinterferon.