PL148260B1 - Method of obtaining mature interferon of human leucocytes - Google Patents

Method of obtaining mature interferon of human leucocytes Download PDF

Info

Publication number
PL148260B1
PL148260B1 PL1981231940A PL23194081A PL148260B1 PL 148260 B1 PL148260 B1 PL 148260B1 PL 1981231940 A PL1981231940 A PL 1981231940A PL 23194081 A PL23194081 A PL 23194081A PL 148260 B1 PL148260 B1 PL 148260B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
interferon
human leukocyte
dna fragment
leukocyte interferon
lelf
Prior art date
Application number
PL1981231940A
Other languages
English (en)
Other versions
PL231940A1 (en
Original Assignee
Genentech Inc
Hoffman La Roche And Co Ag Fa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=27496622&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=PL148260(B1) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Priority claimed from US06/256,204 external-priority patent/US6610830B1/en
Application filed by Genentech Inc, Hoffman La Roche And Co Ag Fa filed Critical Genentech Inc
Publication of PL231940A1 publication Critical patent/PL231940A1/xx
Publication of PL148260B1 publication Critical patent/PL148260B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/52Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • C07K14/555Interferons [IFN]
    • C07K14/56IFN-alpha
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/71Expression systems using regulatory sequences derived from the trp-operon
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • C12P21/02Preparation of peptides or proteins having a known sequence of two or more amino acids, e.g. glutathione
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania dojrzalego interferonu leukocytów ludz¬ kich, zawierajacego 165-166 aminokwasów lub, w przypadku gdy do N-kotfca pierwszego amino¬ kwasu tego interferonu przylaozona jest metionina, zawierajacego 166-167 aminokwasów i o czesciowej sekwenoji Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Glu-Ile-Met-Arg-Ser,jak przedstawio¬ no na sekwencjach na fig. 4 lub fig. 9 w pozycji od 139 do 159.Interferon ludzkich leukocytów /LelF/ zostal po raz pierwszy odkryty i otrzymany w po¬ staci bardzo surowych osadów przez Isaacs'a i Lindenmanna /Proc. R. Soc, B 147, 258-267 /1957/. Od tego czasu podjeto wysilki majace na celu oczyszczenie i charakterystyke tego materialu, co doprowadzilo do otrzymania wzglednie jednorodnych interferonów leukocytów ludzkich otrzymanych od zdrowyoh lub o horyeh na bialaczke dawoów leukocytów /opis paten¬ towy RFN nr 2947134/. Interferony te tworza rodzine bialek znanych z tego, ze posiadaja zdolnosc nadawania komórkom docelowym stanu opornosci na wirusy. Oprócz tego, interferon moze hamowaó namnazanie sie komórek i wplywaó na odpowiedz immunologiczna. Wlasciwosci te sklaniaja do klinicznego uzywania interferonu do leczenia zakazen wirusowych i chorób no¬ wotworowych.Interferony leukocytów oczyszczono do istotnej jednorodnosci /Rubinstein i wsp., Proc.Natl. Acad. Sci., USA, 76, 640-644 /1979/; Zoon i wsp., ibid., 76, 5601-5605 /1979/, o ciezarze czasteczkowym, jak doniesiono, w zakresie od okolo 17 500 do okolo 21 000.O Q Aktywnosc wlasciwa tych preparatów jest nadzwyczaj wysoka i wynosi 2 x 10 do 1 x 10 jednostek/mg bialka, ale wydajnosc z hodowli komórkowych jest zniechecajaco niska. Tym niemniej, postepy w metodach ustalania sekwencji bialek pozwolily na ustalenie czescio¬ wej sekwencji aminokwasów /Zoon i wsp., Science, 207, 527 /1980/; Levy i wsp., Proc.Natl. Acad. Sci., USA, 77, 5102-5104 /19B0/. Wyswietlenie sprawy glikozylacji róznych 148 2602 148 260 interferonów leukocytów nie jest dotychczas calkowite, ale obecnie wiadomo, ze róznice w glikozylacji wsród bialek tej rodziny nie wynikaja tylko ze apektrum zaobserwowanych ciezarów czasteczkowych. Natomiast interferony leukocytów róznia sie znacznie w skla¬ dzie aminokwasowym i sekwencji, a homologia aminokwasów jest w niektórych przypadkach nizsza od 80*.Chociaz izolowanie z leukocytów dawców zapewnilo dostateczna ilosc materialu do je¬ go czesciowej charakteryzacji i ograniczonych badan klinicznych homogennego interfero¬ nu leukocytów, to jest to calkowicie nieodpowiednie zródlo uzyskiwania interferonu w ilosciach niezbednych do badan klinicznych na wielka skale, a nastepnie szerokiego sto¬ sowania zapobiegawczego i/lub leczniczego. I rzeczywiscie, badacze kliniczni stosujacy obecnie w badaniach aktywnosci przeoiwnowotworowej i przeciwwirusowej interferony otrzy¬ mane z ludzkich leukocytów, byli ograniczeni do surowych / < 1S& czystosci/ preparatów tego materialu, a dlugi czas wytwarzania odpowiednich ich ilosci, nawet przy nierealis¬ tycznym poziomie cen, krytycznie opóznial badania na duza skale.Wraz z opracowaniem technologii rekombinantowego DNA, stalo sie mozliwe kontrolowane wytwarzanie przez drobnoustroje, bardzo wielu uzytecznych polipeptydów. Obecnie mozliwe jest, dzieki tej technologii, modyfikowanie bakterii w celu umozliwienia wytwarzania produktów polipeptydowych, takich jak somotostatyna, lancuch A i B insuliny ludzkiej i ludzki hormon wzrostu /Itakura i wsp., Science, 198, 1056-1063 /1977/, Goeddel i wsp., Nature, 281, 544-548 /1979/. Ostatnio uzyto technik rekombinantowego DNA w procesie bakteryjnego wytwarzania pro insuliny 1 tymoiyny o£ 1, a szereg autorów donioslo o utrzy¬ maniu DNA kodujacego interferon leukocytów ludzkich 1 bedacych wynikiem tego procesu bialek o aktywnosci interferonu leukocytów /Nagata i wsp., Nature, 284, 316-320 /19B0/, Mantei i wsp., Gene, 10, 1-10 /1980/, Taniguchi i wsp., Nature, 285, 547-549 /19B0/.Jednak wszystkie te wymienione publikacje lacznie opisuja klonowanie plazmidu zawie¬ rajacego wstawke genetyczna, kodujaoa wytwarzanie jedynie prekursorów interferonu leu¬ kocytów.W publikacji Nagata 1 wsp. opisano wyodrebnianie plazmidu E. ooll, zawierajacego gen interferonu leukocytów. Wskazano w niej, ze komórki E. ooli transformowane tym plazmidem wytwarzaja, w wyniku ekspresji, polipeptyd o aktywnosci biologicznej inter¬ feronu. Przyznano jednak, ze powstajacy w wyniku ekspresji polipeptyd moze nie byó dojrzalym interferonem leukocytów ludzkich, to jest, ze polipeptyd powstajacy w wyniku ekspresji moze zawierac presekwencje nie wystepujaca w postaci dojrzalego interferonu.W publikacji tej, na przelomie stron 319 i 320 stwierdzono: "Mozliwe jest takze, ze E. coli IP sklada sie z sekwencji Le-IP poprzedzonej sekwencja sygnalowa, gdyz analiza sekwenoji nukleotydowej klonowanego IP cDNA ujawnila obszar kodujacy 22 aminokwasy, wystepujacy za pierwszym AUG i poprzedzajacy obszar kodujacy dojrzaly IP /M. Schwarz- stein, N. Mantei i M. S., wyniki niepublikowanen.Wspomniana publikacja Mantei i wsp. opisuje sekwencjonowanie nukleotydu genu leuko¬ cytu klonowanego przez Nagata i wsp. 1 potwierdza, ze obszar kodujacy genu rzeczywis¬ cie zawiera sekwencje, kodujaca bialko sygnalowe. W podsumowaniu w publikacji tej stwierdzono: "Wstawka z 910 par zasad zawiera sekwencje kodujaca z 567 /lub 543/ par zasad, okreslajaca domniemany polipeptyd preinterferonu skladajacy sie z bialka syg¬ nalowego z 23 /lub mniej, mozliwe 15/ aminokwasów, po którym nastepuje polipeptyd interferonu zawierajacy 166 aminokwasów".We wspomnianej publikacji Taninguchi i wsp. porównano sekwencje cDNA wytworzonego przez Taninguchi i wsp. /Gene 10 /1980/, str. 11-157, kodujace interferon fibroblas- tów, i otrzymane przez Mantei i wsp., kodujace interferon leukocytów".Tak wiec, wszystkie dotychczasowe publikacje dotycza wytwarzania prekursorów in¬ terferonu leukocytów. W przeciwienstwie do tego, sposób wedlug wynalazku dotyczy wy¬ twarzania interferonów leukocytów ludzkich o pelnej dlugosci, którym nie towarzyszy zadna ludzka presekwencjs lub jej czesc, to jest dojrzalej postaoi interferonu leuko¬ cytów ludzkioh.148 260 3 Obecnie stwierdzono, ze zastosowanie technologii rekombinantowego DNA /to jest in- ssrcji genów interferonu do drobnoustrojowych nosników ekspresji i ich ekspresji pod kontrola drobnoustrojowych elementów regulatorowych genów/ mogloby byc* najskuteczniej- sza droga zapewnienia duzych ilosci interferonu leukocytów, który, pomimo braku w tak tworzonym materiale glikozylacji charakterystycznej dla materialu pochodzacego od czlowieka, móglby byc* zastosowany klinioznie w szerokim zakresie w leczeniu chorób wirusowych i nowotworowych.Sposób wytwarzania dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich, zawierajacego 165- -166 aminokwasów lub, w przypadku gdy do H-koóca pierwszego aminokwasu tego interfe- ronu przylaczona jest metionina, zawierajacego 166-167 aminokwasów, i o czesciowej sekwencji Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Glu-Ile-Met-Arg-Ser,jak przedstawiono w sekwencjach na fig. 4 lub fig. 9 w pozycji od 139 do 151» przez powodowanie wzrostu hodowli drobnoustrojów transformowanych zdolnym do replikacji drobnoustrojowym nos¬ nikiem ekspresji, i ekspresji interferonu, charakteryzuje sie tym, ze konstruuje sie wektor E. coli zawierajacy promotor trp. E. coli, operator i liderowe miejsce przy¬ laczenia rybosomów trp, izoluje sie fragment DNA kodujacy dojrzaly interferon leuko¬ cytów ludzkich i dokonuje sie insercji tego fragmentu DNA interferonu leukocytów ludzkich za promotorem trp. E. coli, operatorem i liderowym miejscem przylaczenia rybosomów trp, otrzymanym wektorem ekspresji E. coli zdolnym do ekspresji dojrza¬ lego interferonu leukocytów ludzkich transformuje sie w znany sposób szczep E. ooli i powoduje sie wzrost transformowanego drobnoustroju w pozywce zawierajacej dodatek tryptofanu w ilosci wystarczajacej do represji ukladu promotor trp - operator, obni¬ za sie poziom tryptofanu w pozywce az do indukcji transformowanego drobnoustroju do wytwarzania interferonu, po czym transformowany drobnoustrój poddaje sie lizie przez dodatnie lizozymu i nastepna sonifikacje, i wreszcie odzyskuje sie interferon w zna¬ ny sposób, zwlaszcza metoda stracania, za pomoca chromatografii typu "size ezclusion", wysokocisnieniowej chromatografii cieczowej z odwrócona faza /RP-8/ lub chromatografii powinowactwa na unieruchomionych przeciwcialach przeciw interferonowi.Otrzymywanie leukocytów genu stosowanego w sposobie wedlug wynalazku obejmuje na¬ stepujace etapy: 1/ Do skonstruowania próbek syntetycznego DNA, których kodony, w agregacie, repre¬ zentuja wszystkie mozliwe kombinacje nukleotydów zdolne do kodowania czesciowych sek¬ wencji aminokwasów stosuje sie czesciowe sekwencje aminokwasów interferonu leukocytów ludzkich, oczyszczonego do stopnia jednorodnosci. 2/ Przygotowuje sie zbiór kolonii bakteryjnych zawierajacych DNA komplementarny /cDNA/ do indukowanego informacyjnego RNA. Inny indukowany mRNA, znaczony promienio¬ twórczo, hybrydyzuje sie z plazmidowym cDNA tego zbioru. Zhybrydyzowany mRNA eluuje sie i bada pod wzgledem translacji do interferonu w oocytach. Plazmidowy DNA z kolonii, wykazujaoych w ten sposób indukcje aktywnosci interferonu, bada sie dalej przez hybry¬ dyzacje z próbkami przygotowanymi jako opisano wyzej w etapie 1. 3/ Równolegli z przystapieniem do czynnosci w etapie 2 otrzymany w plazmidach cDNA indukowany mRNA stosuje sie do tworzenia niezaleznego zbioru transformowanych kolonii. Próbki otrzymane w etapie 1 stosuje sie do prymowania syntezy znaczonego promieniotwórczo jednoniciowego cDNA, stosowanego w charakterze próbek do hybrydyzacji.Syntetyczne próbki zhybrydyzowane z indukowanym mRNA jako matryca wydluza sie za pomo¬ ca odwrotnej transkrypcji, tworzac indukowane, znaczone promieniotwórczo cDNA.Klony zbioru kolonii, które hybrydyzowaly z otrzymanym w ten sposób znaczonym pro¬ mieniotwórczo cDNA, bada sie dalej w celu potwierdzenia obecnosci genu kodujacego in¬ terferon, o pelnej dlugosci. Kazdego z fragmentów genu otrzymanych w etapie 1 lub 2 o domniemanej czesciowej dlugosci mozna uzyc jako próbki dla genu o pelnej dlugosci; 4/ Gen o pelnej dlugosci, otrzymany jak opisano wyzej, poddaje sie obróbce z uzy¬ ciem syntetycznego DNA, eliminujac jakakolwiek sekwencje liderowa, mogaca zapobiegac bakteryjnej ekspresji dojrzalego polipeptydu i w celu umozliwienia prawidlowego umiej¬ scowienia w nosniku ekspresji drobnoustrojowego promotora w odniesieniu do sygnalów4 148 260 startu i miejsca przylaczenia rybosomów. Powstaly w wyniku ekspresji interferon oczy¬ szcza sie do punktu pozwalajacego na potwierdzenie jego charakteru i oznaczenie aktyw¬ nosci; 5/ Fragment genu interferonu, przygotowany w powyzszy sposób, stosuje sie jako prób¬ ke do hybrydyzacji dla innych, czesciowo homologicznych, rodzajów interferonu leukocytów.Czynnikiem glównie wykorzystywanym w technologii rekombinantowego DNA jest plazmid, niecnromosomaIna petla dwuniciowego DNA znajdowana w bakteriach i innych drobnoustro¬ jach, czesto w wielu kopiach na komórke. W sklad informacji kodowanej przez plazmidowy DNA wchodzi informacja wymagana do replikacji plazmidu w komórkach potomnych /to jest "replikon"/ i zwykle jedna lub wiecej selekcyjnych cech charakterystycznych takich jak, w przypadku bakterii, opornosc na antybiotyki, która pozwala na rozpoznanie klonów ko¬ mórek gospodarza zawierajaoych plazmid, o którym mowa, i uprzywilejowany wzrost w wy¬ biórczych podlozach.Uzytecznosc plazmidów polega na tym, ze moga byc one specyficznie rozszczepione przez taka lub inna endonukleaze restrykcyjna, czyli "enzym restrykcyjny", z których kazdy roz¬ poznaje odmienne miejsce w plazmidowym DNA. Nastepnie mozna wprowadzic do plazmidu frag¬ menty heterologicznych genów lub genu przez laczenie konców w miejscu rozszczepienia, lub zrekonstruowanych konców przylegajacych do miejsca rozszczepienia. Rekombinacja DNA przeprowadzana jest poza komórka, ale wynikajacy z niej "rekombinantowy" plazmid mozna wprowadzic do komórki sposobem znanym jako transformacja. Przez wzrost transformantu otrzymuje sie duza ilosc rekombinantowego plazmidu, zawierajacego gen. Ponadto jesli gen jest wprowadzony do plazmidu prawidlowo w odniesieniu do czesci decydujacej o trans¬ krypcji i translacji kodowanej przez DNA informacji, mozna uzyc otrzymanego nosnika eks¬ presji do faktycznego tworzenia sekwencji polipeptydowej, która wprowadzony gen koduje, w procesie, na który w niniejszym opisie okresla sie jako ekspresje.Ekspresja jest inicjowana w regionie znanym jako promotor, który jest rozpoznawany przez przylaczenie polimerazy RNA. W niektórych przypadkach, jak w przypadku promotora tryptofanu czyli "trp", korzystnego w praktycznym zastosowaniu wynalazku, na regiony promotora zachodza regiony "operatora", tworzac kombinowany promotor - operator. Opera¬ torami sa sekwencje DNA rozpoznawane przez tak zwane bialka represorowe, które sluza do regulacji czestotliwosci inicjacji transkrypcji na poszczególnym promotorze. Polime- raza posuwa sie wzdluz DNA, dokonujac transkrypcji informacji zawartej w niciach kodu¬ jacych, od ich 5'- do 3 '- konca, do informacyjnego RNA, który z kolei ulega tranglakcji do polipeptydu o sekwencji aminokwasów, która koduje DNA.Kazdy aminokwas jest kodowany przez tryplet nukleotydowy czyli "kodon" w "genie strukturalnym", który mozna tak nazywac dla potrzeb niniejszego opisu, to jest w czes¬ ci kodujacej sekwencje aminokwasów produktu ekspresji* Po przylaczeniu promotora, po¬ limera za RNA najpierw dokonuje transkrypcji nukleotydów kodujacych miejsca przylacze¬ nia rybosomu, nastepnie sygnalu inicjacji translacji, czyli sygnalu "start" /zwykle ATG, który w powstajacym informacyjnym RNA staje sie AUG/, a pózniej kodonów nukleoty¬ dowy eh w samym genie strukturalnym. Tak zwane kodony stop ulegaja transkrypcji na kon¬ cu strukturalnego genu, po czym polimeraza moze tworzyc dodatkowa sekwencje mRNA, która z powodu obecnosci sygnalu stop, nie ulegnie translacji na rybosomach.Rybosomy lacza sie z miejscem przylaczenia, które zapewnia informacyjny RNA, w bak¬ teriach tworzony zwykle jako mRNA, przez co dochodzi do tworzenia kodowanego polipep¬ tydu, zaczynajac od sygnalu startu translacji, a konczac na uprzednio wspomnianym syg¬ nale stop. Pozadany produkt tworzy sie, jesli sekwencje kodujace miejsca przylaczenia rybosomów sa umiejscowione prawidlowo w odniesieniu do kodonu inicjacji AUG i jesli wszystkie pozostale kodony nastepuja po kodonie inicjacji w fazie. Powstaly produkt mozna otrzymac przez lize komórek gospodarza. Nastepnie odzyskuje sie produkt przez odpowiednie oczyszczenie od innych bialek bakteryjnych.W zastosowaniu metod technologii rekombinantowego DNA, jak to podano wyzej, osiaga sie wytwarzanie przez drobnoustroje, z wysoka wydajnoscia i czystoscia, rodziny homo-148 260 5 logicznych interferonów leukocytów /nie glikozylowanych/ Jako dojrzalych polipeptydów, którym zasadniczo nie towarzysza odpowiednie presekwencje lub jakiekolwiek ich czesoi.Te interferony moga ulegac bezposredniej ekspresji, odzyskaniu i oczyszczaniu do po¬ ziomu przystosowujacego je do uzycia w leczeniu chorób wirusowych i nowotworowych lu¬ dzi i zwierzat. Udowodniono, ze bialka z tej rodziny, ulegajace w ten sposób ekspre¬ sji, sa skuteczne w badaniach in vitro, a takze, jak wykazano w pierwszej demonstracji tego rodzaju, równiez w badaniach in vivo, przy czym te ostatnie badania obejmuja pier¬ wszy dojrzaly interferon leukocytów wytworzony przez drobnoustroje.Termin "dojrzaly interferon leukocytów" w kontekscie niniejszego opisu definiuje czasteczke interferonu wytworzona przez drobnoustroje /np. bakterie/, pozbawiona grup glikozylowych. Dojrzaly interferon leukocytów wytwarzany sposobem wedlug wynalazku ule¬ ga ekspresji bezposrednio od translacyjnego sygnalu startu /ATG/ dokladnie przed pierw¬ szym kodonem aminokwasu naturalnego produktu. "Dojrzaly" polipeptyd moze wiec zawierac jako pierwszy aminokwas w sekwencji metionine /która koduje ATG/, bez zasadniczej zmia¬ ny charakteru polipeptydu. Z drugiej strony, drobnoustrój-gospodarz moze przeksztalcac produkt translacji z usunieciem poczatkowej metioniny. Dojrzaly interferon leukocytów moze ulegac ekspresji lacznie z przylaczonym bialkiem, innym niz zwykly lider, przy czym koniugat moze byc specyficznie rozszczepialny w srodowisku wewnatrz- lub zewnatrz- komórkowym /patrz brytyjski opis patentowy nr 1007676 AA Wreszcie, dojrzaly interferon moze byc tworzony w polaczeniu z drobnoustrojowym peptydem "sygnalowym", który transpor¬ tuje koniugat do sciany komórkowej, gdzie peptyd sygnalowy ulega odszczepieniu, a doj¬ rzaly polipeptyd wydzieleniu. "Ekspresja" dojrzalego interferonu leukocytów oznacza wy¬ tworzenie przez bakterie lub inne drobnoustroje czasteczki interferonu nie zawieraja¬ cej grup glikozylowych lub presekwencji, co bezposrednio towarzyszy translacji mRNA interferonu leukocytów w oparciu o genom ludzki.Poszczególne leukocyty bialka interferonowe sa zdefiniowane przez okreslony DNA ge¬ nu /figury 3 i 8/ i dedukcyjna sekwencja aminokwasów /figury 4 i 9/. Nalezy rozumiec, ze w odniesieniu do tych poszczególnych interferonów, wlasciwie wszystkich z rodziny leukocytowych bialek interferonowych wytwarzanych sposobem wedlug wynalazku, istnieja naturalne wariaoje zalezne od alleli, pojawiajace sie od osobnika do osobnika. Waria¬ cje te mozna wykazac przez róznice /róznice/ w calkowitej sekwencji lub przez delecje, podstawienia, inseroje lub dodanie aminokwasu /aminokwasów/ we wspomnianej sekwencji.Dla kazdego z leukocytowych bialek interferonowych wedlug wynalazku, oznaczonych jako LelF A do LelF J, wspomniane wariacje zalezne od alleli objete sa zakresem oznaczenia lub definiujacego je terminu i w ten sposób, zakresem niniejszego wynalazku.Wynalazek jest blizej wyjasniony na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia dwie sek¬ wencje aminokwasów wspólne wszystkim rodzajom interferonu wyizolowanym z leukocytów ludzkich i oczyszczonym do stopnia jednorodnosoi, oznaczone T-1 i T-13. Wszystkie po- tenojalne sekwencje RNA kodujace te peptydy ukazano tak, jak i odpowiednie sekwencje DNA; litery A, T# G, C i U oznaczaja odpowiednio, nukleotydy zawierajace jako zasade adenine, tymine, guanine, cytozyne i uracyl. Litera N oznacza jakikolwiek z nukleoty- dów A, G, C i U. Polinukleotydy sa przedstawione jako odczytywane w kierunku od 5' /z lewej/ do 3' A prawej/, a gdy przedstawiony jest dwuniciowy /"d.s."/ DNA, w kie¬ runku odwrotnym dla nizszej lub nie kodujacej nici; fig. 2 przedstawia autoradiogram wykazujacy hybrydyzacje potencjalnego plazmidu LelF z syntetycznym dezoksyoligonukle- 32 otydem znaczonym J P; fig. 3 przedstawia sekwencje nukleotydów /nic kodujaca/ osmiu fragmentów genowych izolowanych jako kandydujace do uzycia w ekspresji interferonów leukocytów, odpowiednio oznaczonyoh od "A"do "H"; inicjacyjny kodon translaoji ATG i tryplet dla kazdego zakonczenia LelF jest podkreslony; po kodonach stop czyli tryple- tach zakonczenia nastepuja regiony 3' nie ulegajace translacji.Przedstawiono równiez gen LelF A, który stracil jeden kodon znajdowany w innych przedstawionych genach, jak wskazano w trzeciej linii A na fig. 3« Nie ulegajacy translacji region 5* poprzedza sekwencje liderowe. Po wyizolowaniu, we fragmencie H6 148 260 brak pelnej presekwencji lidera, ale zawiera on nie naruszony gen domniemanego dojrza¬ lego LelF E. We fragmencie G po wyizolowaniu brak pelnej sekwencji kodujacej* Figura 4 przedstawia porównanie sekwencji osmiu bialek LelF przewidzianych na pod¬ stawie sekwencji nukleotydów. Uzyto Jednoliterowych skrótów zalecanych przez IUPAC- -IUB Commiaion on Blochemical Nomenclature: A - alanina, C - cysteina, D - kwas aspa¬ raginowy, E - kwas glutaminowy, F - fenyloalanina, G - glicyna, H - histydyna, I - izoleucyna, K - lizyna, L - leacyna, M - metionina, H - asparagina, P - prolina, Q - glutamina, R - arginina, S - seryna, T - treonina, V - walina, W - tryptofan i Y - tyrozyna• Numery odnosza sie do pozycji aminokwasów /S odnosi sie do peptydu syg¬ nalowego/. Kreske w 165 aminokwasie sekwencji LelF A w pozycji 44 sprowadzono w celu ustawienia sekwencji LelF A w Jednym szeregu z 166-aminokwasowymi sekwencjami pozos¬ talych LelF. Sekwencje LelF E ustalono przy zignorowaniu nadprogramowego nukleotydu /pozycja 187 na fig. 3/ w regionie kodujacym. Gwiazdka wskazuje kodony zakonczenia w fazie* Przedstawiono równiez aminokwasy wspólne wszystkim LelF /z wylaczeniem pseudo- genu LelF E/. Podkreslone reszty sa resztami aminokwasów obecnymi równiez w interfe¬ ronie fibroblastów ludzkich.Figura 5 przedstawia mapy restrykcyjne sklonowanych DNA osmiu typów LelF /A do H/.Hybrydowe plazmidy konstruowano metoda laczenia konców dC : dG /D.V. Goeddel i wsp., Nature, 287, 411-416 /19B0//. Tak wiec, inserty cDNA mozna wyciac za pomoca Pstl.Linie na kazdym z konców insertów cDNA reprezentuja boczne homopollmeryczne zakoncze¬ nia dC:dG. Wskazano pozycje miejsc restrykcyjnych PvuII, EcoRI 1 Bglll. Obszary za¬ cieniowane na rysunku przedstawiaja sekwencje kodujace dojrzalych LelF. Obszary za¬ kreskowane skosnie przedstawiaja sekwencje kodujace peptydy sygnalowe, a obszary ot¬ warte ukazuja nie kodujace sekwencje 3* i 5*.Figura 6 przedstawia schematycznie konstrukcje genu kodujacego bezposrednia synte¬ ze przez drobnoustroje dojrzalego LelF A. Wskazano miejsca restrykcyjne i resuty /wPst I" itp./. Termin "b.p." oznacza "pary zasad".Figura 7 /nie w skali/ schematycznie przedstawia mape restrykcyjna dwóch fragmen¬ tów genów zastosowanych w wywolywaniu ekspresji dojrzalego interferonu leukocytów LelF B. Wskazane sekwencje kodonów przedstawiaja zakonczenia nici kodujacej bedace rezultatem trawienia enzymem restrykcyjnym Sau3a w dwóch, pokazanych przypadkach.Figury 8 19 przedstawiaja sekwencje DNA 1 aminokwasów S bialek LelF wytwarzanych sposobem wedlug wynalazku, wlacznie z typami I i J /co do odpowiadajacych Jednolitych skrótów, patrz fig. 4/* W fig. 9 gwiazdka wskazuje kodon zakonczenia w odpowiadajacej mu sekwencji DNA, a lacznik delecje lub przerwe w sekwencji.Zastosowany drobnoustrój. W sposobie wedlug wynalazku korzystnie stosuje sie drobno¬ ustroje: E. coli x 1776, opisany w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 4190495 oraz B. coli K-12 szczep 294 /end A, thi", hsr", hsm£/, opisany w brytyjskim opisie patentowym nr 2055382 A. Kazdy z nich jest zdeponowany w American Type Culture Collection /numery rejestracyjne ATCC, odpowiednio, 31537 i 31446/. Cala prace zwiaza¬ na z rekombinantowym DNA prowadzi sie zgodnie ze stosowanymi wskazówkami National In- stitutes of Health.Wynalazek, w najkorzystniejszej postaci, opisano w odniesieniu do E. coli, w tym nie tylko szczepów E, ooli x 1776 1 E. coli K-12 szczep 294, zdefiniowanych wyzej, ale i innych znanych szczepów E. coli, takich jak E. coli B lub innych szczepów drobno¬ ustrojów, z których wiele jest zdeponowanych i dostepnych w znanych instytucjach depo¬ nujacych drobnoustroje, takich jak American Type Culture Collection. Patrz równiez opublikowany opis zgloszenia RFN nr 2644432. Do tych innych drobnoustrojów naleza np. laseczki, takie jak Bacillus subtilis i inne Enterobacteriaceae, wsród których mozna wspomniec, jako przyklady, Salmonella typhimurlum i Serratia marcescene, uzywajao plaz¬ midów, które moga powodowac reaplikacje i wywolywac ekspresje sekwencji heterologicz- nych genów w organizmie bakterii* Jako organizm bedacy gospodarzem w wytwarzaniu bia¬ lek interferonowych wedlug wynalazku, przez ekspresje genów kodujacych te bialka pod kontrola promotora drozdzowego mozna równiez korzystnie zastosowac drozdze, takie jak Saccharomyces cerevisiae.148 260 7 Zwiazki wytworzone sposobem wedlug wynalazku mozna formulowac znanymi sposobami w celu otrzymania farmaceutycznie uzytecznych preparatów, w których polipeptyd wytwo¬ rzony sposobem wedlug wynalazku laczy sie z domieszka farmaceutycznie dozwolonego nos¬ nika. Odpowiednie nosniki i sposoby otrzymywania preparatów opissno w Reminton's Phar- maceutical Sciences przez E.W* Martina. Preparaty te zawieraja skuteczna ilosc bialka interferonowego wytworzonego sposobem wedlug wynalazku z odpowladnia iloscia nosnika i stanowia srodki lecznicze nadajace sie do skutecznego podawania pacjentowi. Korzy¬ stnym sposobem podawania jest droga pozajelitowa.LelF wytworzony sposobem wedlug wynalazku mozna podawac pozajelitowo pacjentom wy¬ magajacym przeciwnowotworowego lub przeciwwirusowego leczenia oraz pacjentom w stanie immunosupresji* Wielkosc i czestotliwosc dawek moze byc analogiczna do obecnie stoso¬ wanych w badaniach klinicznych materialów pochodzenia ludzkiego, np. /1-10/x10 jed¬ nostek dziennie, a w przypadku materialów o czystosci wyzszej od 1£ prawdopodobnie do np. 5 x 10 jednostek dziennie.Przykladem odpowiedniego dawkowania zasadniczo homogennego bakteryjnego LelF w po¬ staci do podawania pozajelitowego, moze byc rozpuszczenie 3 mg LelF o aktywnosci wlas- o ciwej np* 2 x 10 jednostek /mg w 25 ml 5 N ludzkiej albuminy surowiczej, przesaczenie przez saczek bakteriologiczny i aseptyczny, podzielenie przesaczonego roztworu do 100 fiolek, z których kazda zawierac bedzie 6 x 10 jednostek czystego interferonu odpo¬ wiedniego do podawania pozajelitowego* Korzystnie fiolki przechowuje sie przed uzyciem w niskiej temperaturze /-200/.Wynalazek zilustrowano blizej w nastepujacych przykladach: Przyklad I* Oczyszczanie mRNA LelF mRNA LelF mozna otrzymac z leukocytów ludzkich pochodzacych zwykle od pacjentów z przewlekla bialaczka szpikowa, indukowanych w celu wytworzenia interferonu wirusem Sendal lub choroby Bewcastle, jak opisano w opublikowanym opisie zgloszenia patento¬ wego RFN nr 2947134* Szczególnie korzystnym zródlem, którego uzywa sie w sposobie we¬ dlug wynalazku, jest linia komórkowa oznaczona KG-1, otrzymana od pacjenta z ostra bialaczka szpikowa. Ta linia komórkowa, opisana przez H. P. Koefflera i D. W. Golde*a, Science, 200, 1153 /1978/, rosnie latwo w hodowli w podlozu hodowlanym zawierajacym RPMI /Rosewell Park Memorial Institute/ 1640 + 10$ FCS /plodowa surowica cieleca/ inaktywowana cieplem, 25 mM buforu HEPES /kwas N-2-hydroksyetylopiperazyno-N'-2-ete- nosulfonowy/ i 50 ug/ml gentamycyny i jest przeszczepiana z podzialem na 1-3 czesci dwa razy na tydzien.Komórki mozna wymrozic z wymienionego poprzednio podloza wzrostowego + 10$ dwu- metylosulfotlenku. KG-1 zdeponowano w American Type Culture Collection /nr rejestra¬ cyjny ATCC CRL 8031/* Komórki KG-1 indukuje sie w celu wytworzenia mRNA interferonu leukooytów wirusem Sendai lub choroby Newcastle metoda opisana przez Rubinsteina i innych /Proc* Natl.Acad. Sci. USA, 76, 640-644 /1979//. Komórki zbiera sie po uplywie 5 godzin po induk¬ cji i otrzymuje sie RNA metoda: tiocyjanian guanidyny-chlorowodorek guanidyny /Chirg- win i wsp*, Biochemistry, 18, 5294-5299 /1979//. RNA z komórek nie indukowanych izo¬ luje sie w ten sam sposób. Do otrzymania frakcji 128 mRNA poli /A/ uzywa sie chroma¬ tografii na oligodezoksytymidyno /dT/ - celulozie i ultrawirowania w gradiencie sa¬ charozy, jak opisali Green i wsp., /Arch. Eiochem. Biophys., 172, 74-69 /1976// i Oku- yuma i wsp., /Arch. Biochem. Biophys., 188, 98-104 /1978//. Taki mRNA wykazuje miano interferonu 8000-10 000 jednostek/jug w badaniu w oocytach Xenopus Iaevis /Cavalieri i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 3287-3291 /1977//.Przyklad II. Przygotowanie zbiorów kolonii zewierajacych sekwencje LelF cDNA.Do otrzymania dwuniciowego cDNA zwyklymi metodami /Wickens i wsp., J. Biol. Chem., 253, 2483-2495 /1978/ i Goeddel i wsp., Nature, 281, 544-548 /1979// stosuje sie 5 ^ug mRNA. cDNA frakcjonuje sie pod wzgledem wielkosci za pomoca elektroforezy w 6% zelu8 148 260 poliakryloamidowym i za pomoca elektroelucji odzyskuje sie 230 ng materialu w zakresie 500-1500 b.p. Do konców tego cDNA, w 100 ng próbce, wprowadza sie reszty dezoksycyty- dyny /dC/f jak opisali Chang i wsp., Nature, 275, 617-624 /1978/, laczy z 470 ng plaz¬ midu pBR322, do konców którego wprowadzono reszty dezoksyguanozyny /dG/ w miejscu Pstl /Bolivar i wap., Gene, 2, 95-113 /1977// i uzywa do transformowania E. coli x 1776.Otrzymuje sie okolo 130 transformantów opornych na tetracykline, wrazliwych na ampicy¬ line, na ng cDNA.W drugim podobnym eksperymencie otrzymuje sie okolo 1000 transformantów E. coli K-12 szczep 294 opornych na tetracykline, wrazliwych na ampicyline, na ng cDNA. W tym przy¬ padku po frakcjonowaniu pod wzgledem wielkosci odzyskuje sie za pomoca elektroelucji cDNA w zakresie 600-1300 b.p. w celu wprowadzenia reszt dC.P r z y kl a d III. Otrzymywanie i stosowanie syntetycznych dezoksynukleotydów Znajomosc sekwencji aminokwasów kilku fragmentów trypsynowych interferonu leukocy¬ tów ludzkich pozwala wyznaczyc syntetyczne dezoksynukleotydy komplementarne do róznych regionów mRNA LelF. Wybrano dwa peptydy trypsynowe T1 i T13, poniewaz ich sekwencja aminokwasów wymaga syntezy tylko, odpowiednio, 12 i 4 undekarnerów odpowiadajacych wszy¬ stkim mozliwym sekwencjom kodujacym /fig. 1/. Syntetyzuje sie 4 zestawy próbek dezoksy- nukleotydów, dla kazdej z sekwencji zawierajacych albo trzy /T-1A, B, C, D/, albo jeden /T-13 A, B, C, D/ oligodezoksynukleotyd. Wskazane komplementarne dezoksynukleotydy o dlugosci 11 zasad syntetyzuje sie chemicznie metoda fosfotriestrowa /Crea i wsp., Proc.Natl. Acad. Sci. USA, 75, 5765-5769 /1978//. Otrzymuje sie cztery indywidualne próbki w serii T-13 a dwanascie próbek T-1 w czterech pulach po trzy próbki, jak przedstawio¬ no na fig. 1.Przygotowuje sie cztery indywidualne próbki serii T-13 i dwunastu T-1 w czterech pu¬ lach po trzy prlmery w kazdej i uzywa sie je do prymowania syntezy znaczonego promienio¬ twórczo jednoniciowego cDNA, uzywanego jako próbki do hybrydyzacji.Matryca mRNA jest albo 12S RNA z komórek KG-1 indukowanych wirusem Sendai /8000 jed¬ nostek aktywnosci IP//ig/, albo mRNA calkowicie poli /A/ z nie indukowanych leukocytów / < 10 jednostek/yug/. Z primerów tych, stosujao znane warunki reakcji /Noyes i wsp., Proc. Natl. icad. Sci. USA, 76, 1770-1774 /1979//, otrzymuje sie cDNA znakowany 32P.Reakcje prowadzi sie w objetosci 60/il, w 20 mM Tris-HCl /pH 8,3/, 20 mM KC1, 8 mM MgClp, 30 mM /S -merkaptoetanolu. W mieszaninach reakcyjnych znajduje sie 1 iig kazdego z primerów /to jest 12 jag w calosci dla serii T-1t 4 yug w calosci dla serii T-13/, 2 ug "indukowanej" frakcji 12S mRNA /lub 10/ig nie indukowanego mRNA poli /i//, 0,5 mM dATP, dCTP, dTTP, 200/iCi /oC 32P/ dCTP /Amersham, 2-3000 Ci/milimol/ i 60 jednostek odwrotnej transkryptazy /Bethesda Research Laboratories/.Produkt oddziela sie od materialu nie znaczonego za pomoca saczenia zelowego na 10 ml kolumnie zelu Sephadex^ G-50, traktuje sie w ciagu 30 minut w temperaturze 70°C 0,3 N NaOH w celu rozlozenia RNA i zobojetnia HC1. Hybrydyzacje przeprowadza sie jak opisali Kafatoo i wsp., Nucleic Acids Res., 7, 1541-1552 /1979/.Przyklad IV. Identyfikacja klonów pL1-pL30 Stosuje sie zwykla metode izolowania plazmidów opisana przez Birnboima i wsp., Nuc¬ leic Acids Res., 7, 1513-1523 /1979/, w celu otrzymania 1/ag plazmidowego DNA z kaz¬ dych 500 indywidualnych transformantów E. coli szczep 294 /patrz przyklad II/. Kazda próbke DNA denaturuje sie i nanosi na saozki nitrocelulozowe /po trzy jednakowe/ me¬ toda Kafatosa i wsp., /patrz wyzej/.Trzy zestawy saczków nitrocelulozowych, zawierajacych po 500 próbek plazmidu hy¬ brydyzuje sie z: a/ indukowanym primerem cDNA prymowanym zestawem primerów T-1, 2/ indukowanym cDNA prymowanym T-13, oraz c/ nie indukowanym cDNA preparowanym z uzy¬ ciem obydwu serii primerów.Klony sa uwazane za pozytywne, jesli hybrydyzuja silniej z jedna lub dwoma próbka¬ mi indukowanego cDNA niz z calkowicie nieindukowana próbka. Z pieciuset wybiera sie trzydziesci "pozytywnych" klonów /pL1-pL30/ do dalszej analizy.148 260 9 Przyklad V. Identyfikacja klonów pL31-pL39. Izolowanie plazmidu /nr 104/ zawierajacego fragment genu LelF.Transformanty E. coli x 1776 poddaje sie screeningowi metoda hybrydyzacji kolonii /Grunstein i Hogness, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 72, 3961-3965 /1975// z uzyciem ja¬ ko próbki indukowanego mRNA znaczonego ^ P /Lillenhaug i wsp.t Biochemistry, 15f 1858-1865 /1976//. Nieznaczony mRNA z nie indukowanych komórek miesza sie z próbka w stosunku 200:1 w celu kompetycji z nie indukowanym mRNA, obecnych w preparacie znaczo- nym J P. Hybrydyzacja znaozonego mRNA powinna byd uprzywilejowana w odniesieniu do kolonii zawierajacych indukowane sekwencje. Otrzymuje sie trzy klasy transformantów: 1/ 2-3* kolonii hybrydyzuje z ^2P-mRNA bardzo silnie, 2/ 10* hybrydyzuje znacznie slabiej niz klasa 1 oraz 3/ pozostale kolonie nie daja wykrywalnego sygnalu hybrydy¬ zacji* Pozytywne kolonie /klasa 1 i 2/ bada sie pod wzgledem obecnosci sekwencji specyfi¬ cznych dla interferonu w oznaczeniu zaleznym od hybrydyzacji mRNA specyficznego dla interferonu z plazmidowym DNA. Najpierw hoduje sie indywidualnie 60 wybitnie pozytyw¬ nych kolonii /klasa 1/ w 100 ml podloza M9 uzupelnionego tetracyklina /20 /ig/ml/f kwasem dwuaminopimelinowym /100 /ag/ml/, tymidyna /20 yug/ml/ i d-biotyna /1 /ig/ml/.Podloze M9 zawiera na litr: 6 g Na2HP04 3 g KH2P04 0,5 g NaCl i 1 g NH-C1. Po wy¬ jalowieniu w autoklawie dodaje sie 1 ml jalowego 1 M MgSO- i 10 ml jalowego 0,01 M CaClp* Tworzy sie pule z 10 hodowli i izoluje plazmidowy DNA z 6 pul, jak to opisali Clewell i wsp., Biochemistry, 9, 4428-4440 /1970/. 10yug z kazdej puli plazmidowego DNA rozszczepia sie Hind III, denaturuje i wiaze kowalencyjnie z DBM /dwuazobenzylo- ksymetylo/- bibula.Z kazdym saczkiem hybrydyzuje sie 1 fig oczyszczonego mRNA z indukowanych komórek. mRNA, który nie hybrydyzowal, usuwa sie za pomoca przemywania. Specyficznie zhybrydy- zowany mRNA eluuje sie i poddaje translacji w oocytach Xenopus laevis. W tym oznacze¬ niu wszystkie szesc pul okazuje sie ujemnymi. Z 59 slabo pozytywnych kolonii /klasa 2/ przygotowuje sie piec pul z dziesieciu kolonii kazda i jedna pule z dziewieciu kolonii, przeprowadza preparatyke plazmidów i bada jak opisano wyzej. Wsród badanych szesciu pul, jedna /K10/ hybrydyzuje z mRNA interferonu na poziomach znacznie wyzszych od tla przy kazdorazowym badaniu.W celu identyfikacji cDNA specyficznego dla interferonu przeprowadza sie preparaty¬ ke plazmidowego DNA z 9 kolonii puli K10 i bada indywidualnie. Dwa z dziewieciu plaz¬ midów /nr 101 i nr 104/ przylaczaja mRNA interferonu na poziomie znacznie wyzszym od tla. Unikalny fragment restrykcyjny Bglll zawierajacy 260 b.p. izoluje sie z plazmidu 32 nr 104, znakuje P metoda opisana przez Taylora i wsp., Blochem. Piophys. Acta., 442, 324-330 /1976/ i uzywa jako próbki do niezaleznego screeningu 400 transformantów E. coli 294 metoda screeningu kolonii in situ /Grunstein i Hogness, Proc. Natl. Sci. USA, 72, 3961-3965 /1975/. Dziewiec kolonii /pL31-pL39/ zidentyfikowano jako hybrydyzujace w róznym stopniu z ta próbka.Poza tym, w ten sam sposób znaczony fragment o 260 b-p. stosuje sie do niezaleznego screeningu 4000 transf ormantów E. coli 294. 50 kolonii identyfikuje sie jako hybrydy- zujaoe w róznym stopniu z ta próbka. Jedna z próbek zawiera fragment LelF G, jedna - LelF H, a inna zawiera fragment oznaczony LelF H1, przypuszczalnie allel LelF H.Otrzymany hybrydowy plazmid oznaczono "pLelF H", itp.Przyklad VI. Izolacja i oznaczenie sekwencji pierwszego genu LelF o pelnej dlugosci.Ze wszystkich 39 potencjalnych klonów cDNA LelF otrzymuje sie plazmid DNA i ponownie poddaje screeningowi z taka sama próbka DNA o 260 b.p. za pomoca metody hybrydyzacji Kafatosa i wsp. /patrz wyzej/. Trzy plazmidy /pL4, pL31, pL34/ daja bardzo silne sygna¬ ly hybrydyzacji, cztery /pL13, pL30, pL32, pL36/ hybrydyzuja umiarkowanie, a trzy /pL6, pL8, pL14/ slabo hybrydyzuja z próbka.10 148 260 Poddaje sie równiez screeningowi 39 potencjalnych rekombinantowych plazmidów cDNA LelF stosujac jako próbki do hybrydyzacji bezposrednio syntetyczne undekamery znaczo¬ ne ^2P /indywidualne pule primerów T1, lub indywidualne primery T13/. Wybiera sie ta¬ kie warunki hybrydyzacji, ze do wykrycia sygnalów hybrydyzacji wymagane jest dokladne parowanie zasad /Wallace i wsp.t Nucleic Acids Res., 6, 3543-3557 /1979/. Tak wiec w standardowy sposób metoda klarowanych lizatów /Clewell i wsp., patrz wyzej/, otrzymu¬ je sie plazmidowy DNA z 39 klonów i oczyszcza za pomoca chromatografii kolumnowej na kolumnie Biorad Agarose A-50.Próbki po 3 /ig kazdego preparatu przeprowadza sie w postac linearna za pomoca Zco RI, denaturuje w odczynie zasadowym i nakrapla na 2 oddzielne saczki nitrocelulozowe, po 1,5yUg na miejsce /Kafatos i wsp., patrz wyzej/* Indywidualne syntetyczne primery dezoksyoligonukleotydowe i pule primerów poddaje sie fosforylacji za pomoca /f P/ ATP w nastepujacy sposób: 50 pikomoli oligonukleotydu i 100 pikomoli f£ * P/ ATP /New England Nuclear, 2500 Ci/milimol/ laczy sie w 30 /ii 50 mM Tria-HCl, 10 mM MgCl2, 15 mK fi -merkaptoetanolu. Dodaje sie 2 jednostki kinazy polinukleotydowej T4 1 po 30 minutach inkubacji w temperaturze 37°C, oczyszcza sie primery znaczone P za po¬ moca chromatografii na 10 ml kolumnach zelu Sephadex^ G-50. Hybrydyzacje przeprowa¬ dza sie z uzyciem primera T-13C /10 zliczen/min./ lub puli primerów T-1C /3 x 10 zliozen/min./. Hybrydyzacje przeprowadza sie w temperaturze 15°C w ciagu 14 godzin w 6 x SSC /1 x SSC = 0,15 M NaCl, 0,015 M cytrynian sodowy, pH 7,2/, 10 x w roztwo¬ rze Denhardta /0,256 bydleca albumina surowicza, 0,24 poliwinylopirolidon, 0,24 Ficoll/, jak opisali Wallace i wsp. /patrz wyzej/. Saczki przemywa sie w ciagu 5 minut /3 razy/ w temperaturze 0°C 6 x SSC, suszy i eksponuje na blonie czulej na promienie 7. Wyniki przedstawiono na fig. 2 dla puli ** P-primerów T-13C i T-1C.Stwierdzono, ze plazmidowy DNA z klonu 104 wykazuje znaczna hybrydyzacje z pula primerów T-1C i primerem T-13C, ale nie wykazuje wykrywalnej hybrydyzacji z innymi un- dekarnerami. Jak przedstawiono na fig. 2, kilka z potencjalnych plazmidów LelF /pL2, 4, 13. 17, 20, 30, 31t 34/ równiez hybrydyzuje z obydwoma tymi próbkami. Tym niemniej analiza restrykcyjna wykazuje, ze tylko jeden z tych plazmidów, pL31, równiez zawiera wewnetrzny fragment Bglll o 260 b.p. Trawienie pL31 Pstl wykazuje, ze dlugosó insertu cDNA wynosi okolo 1000 b.p.Analizuje sie sekwenoje calego insertu Pstl z pL31 zarówno chemiczna metoda Maxama- -Gilberta /Methods Enzymol., 65, 499-560 /1980//, jak i metoda dwudezoksy zakonczenia lancucha /Smith, Methods Enzymol., 65, 560-580 /1980// po podklonowanlu fragmentów Sau3a do nosnika M13. Sekwencje DNA przedstawiono na fig* 3 /nAw/. Odpowiednia trans- lacyjna faze odczytywania mozna przewidziec z posiadanej informacji co do sekwencji aminokwasów w bialku, znanego zakresu ciezarów czasteczkowych LelF i wzglednego wyste¬ powania trypletów stop w trzech mozliwych fazach odczytywania, co z kolei pozwala na przewidzenie calkowitej sekwencji aminokwasów, wlacznie z prepeptydem lub peptydem sygnalowym* Pierwszy kodon inicjacji translacji ATG stwierdzono w pozycji 60 sekwencji nukleo- tydów od konca 5', a nastepnie o 188 kodonów dalej wystepuje tryple t zakonczenia TGA, tak wiec istnieja 342 nie ulegajace translacji nukleotydy na koncu 3', a nastepnie sekwencja poli /A/. Domniemany peptyd sygnalowy /przypuszczalnie zaangazowany w wydzie¬ laniu dojrzalego LelF przez leukocyty/ ma dlugosó 23 aminokwasów. 165 aminokwasów skla¬ dajacych sie na dojrzaly LelF ma wyliczony ciezar czasteczkowy 19 390. LelF kodowany przez pL31 nazwano LelF A. Peptydy trypsynowe T1 i T13 LelF B odpowiadaja aminokwasom 145-149 i 57-61 w odniesieniu do LelF A, jak to jest widoczne z danych dotyczacych sek¬ wencji /"A"/ na fig. 4. Faktycznymi kodujacymi sekwencjami DNA znajdowanymi w tych dwóch regionach sa sekwencje reprezentowane przez pule primerów T1-C i primer T13-C /patrz fig. 8/.14B 260 11 Przyklad VII. Bezposrednia ekspresja dojrzalego Interferonu leukocytów A /LelF A/. 1. Uwagi ogólna. Metoda ekspresji LelF bezposrednio jako dojrzalego interferonu jest wariantem metody wczesniej uzywanej dla ludzkiego hormonu wzrostu /Goeddel i wsp., Nature, 261, 544-546 /1979//, w tym zakresie, w jakim wlacza kombinacje synte¬ tycznego /N-koncowego/ i komplementarnych DNA.Jak wskazano na figurze 6, miejsce endonukleazy restrykcyjnej Sau3a jest dogodnie ulokowane miedzy kodonami 1 a 3 LelF A* Zaplanowane sa dwa syntetyczne dazoksynukleo- tydy, które wlaczaja kodon inicjacji translacji ATG, przywracaja kodon pierwszego aminokwasu /cysteina/ 1 tworza lepkie konce EcoRI. Te oligomery laczy sie z fragmen¬ tem Sau3a - AvaII pL31 o 34 b.p. Powstaly produkt o 45 b.p. laczy sie z dwoma dodat¬ kowymi fragmentami DNA w celu konstrukcji hybrydowego genu syntetyczno-naturalnego kodujacego LelF oraz zakonczonego miejscami restrykcyjnymi EcoRI i Pstl. Gen ten wla¬ cza sie do pER322 miedzy miejsca EcoRI i Pstl z otrzymaniem plazmidu pLelF Al. 2. Konstrukcja tryptofanowego elementu kontrolnego, zawierajacego promotor trp E. coli, operator 1 liderowe miejsce przylaczenia rybosomów trp, ale bez sekwencji inicjacji translacji /ATG/. Plazmid pGMI zawiera petryptofanowy operon E. coli z de- lecja A LE1413 /Uiozzari i wsp., J. Bacteriology, 133, 1457-1466 /1978// i skutkiem tego doprowadza do ekspresji polaczonego bialka zawierajacego 6 pierwszych aminokwa¬ sów lidera trp i w przyblizeniu 3 ostatnie polipeptydu E trp /w dalszej czesci opisu lacznie nazywanego LEV, jak równiez polipeptyd D trp w calosci, wszystko pod kontro¬ la ukladu promotor-operator. 20 ug plazmidu trawi sie enzymem restrykcyjnym PvuII, który rozszczepia plazmid w 5 miejscach.Fragmenty genu laczy sie nastepnie z lacznikami EcoRI /skladajacymi sie z samokom- plementarnego oligonukleotydu o sekwencji pCATGAATTCATG/ zapewniajac miejsce rozszcze¬ pienia EcoRI do pózniejszego klonowania do plazmidu zawierajacego miejsce EcoRI* 20 ug fragmentów DNA otrzymanych z pGMl traktuje sie w ciagu nocy w temperaturze 4°C 10 jednostkami ligazy DNA T4 w obecnosci 200 pikomoli 5 "-fosforylowanego syntetycz¬ nego oligonukleotydu pCATGAATTCATG w 20 ul buforu dla ligazy DNA T4 /20 mM Tris, pH 7, 6, 0,5 mM ATP, 10 mM MgCl2, 5mM dwutiotreitol/. Nastepnie roztwór ogrzewa sie w ciagu 10 minut w temperaturze 70°C w celu zatrzymania laczenia. Laczniki rozszczepia sie przez trawienie EcoRI, rozdEiela sie za pomoca elektroforezy w 5& zelu poliakry- loamidowym /w ponizszej czesci niniejszego opisu okreslanym PAGE/ i trzy najwieksze fragmenty izoluje sie z zelu przez, po pierwsze, barwienie bromkiem etidium, zlokali¬ zowanie fragmentów w swietle ultrafioletowym i wyciecie z zelu interesujacych czesci.Kazdy fragment umieszcza sie w woreczku dializacyjnym wraz z 300 ^litrami 0,1 x TBE i poddaje elektroforezie przy róznicy potencjalów 100 V w ciagu 1 godziny w 0,1 x buforze TBE /bufor TBE zawiera 10,6 g Tris w postaci zasady, 5t5 g kwasu borowego, 0,09 g NapEDTA w 1 litrze wody/. Zbiera sie roztwór wodny z woreczka dializacyjnego, ekstrahuje fenolem, ekstrahuje chloroformem, doprowadza do stezenia 0,2 M chlorkiem sodowym i odzyskuje DNA w wodzie po straceniu etanolem. Gen zawierajacy promotor- -operator trp z lepkimi koncami EcoRI identyfikuje sie metoda, która zostanie nastep¬ nie opisana, wymagajaca insercji fragmentów do plazmidu wrazliwego na tetracykline, który po wlaczeniu promotora-operatora staje sie odporny na tetracykline.Plazmid pBRHI /Rodriguez i wsp., Nucleic Acids Res., 6, 3267-3287 /1979// wykazu¬ je ekspresje opornosci na ampicyline i zawiera gen odpornosci na tetracykline, ale nie majac przylaczonego promotora, nie wykazuje ekspresji tej odpornosci. Plazmid jest skutkiem tego wrazliwy na tetracykline. Przez wprowadzenie ukladu promotor-ope¬ rator do miejsca EcoRI, plazmid mozna uczynic odpornym na tetracykline. pBRHI trawi sie EcoRI i usuwa enzym za pomoca ekstrakcji fenolem, a nastepnie chlo¬ roformem i odzyskuje w wodzie po straceniu etanolem. Powstajace czasteczki DNA sa w oddzielnych mieszaninach reakcyjnych mieszane z kazdym z trzech fragmentów DNA otrzy- manyoh jak opisano wyzej i laczone za pomooa ligazy DNA T4, Jak opisano wyzej.12 148 260 DNA obecny w mieszaninie reakcyjnej stosuje sie do transformowania kompetentnej B. co¬ li K-12 szczep 294 zwyklymi metodami /Hershfield i wsp.f Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 71# 3455-3459/1974// i wysiewa bakterie na plytki IB /Luria-Berteni/ zawierajace am¬ picyline w stezeniu 20 /ig/ml i tetracykline w stezeniu 5 ig/nil. Selekcjonuje sie kil¬ ka kolonii, izoluje plazmidowy DNA i potwierdza obecnosc zadanego fragmentu za pomoca analizy enzymami restrykcyjnymi. Powstaly plazmid nazwano pBRHtrp.Produkt trawienia EcoRI i BamHI genomu wirusa hepatitis B otrzymuje sie zwyklymi sposobami i klonuje do miejsc EcoRI i BamHI plazmidu pGH6 /Goeddel i wsp., Nature, 281, 544 /1979// w celu utworzenia plazmidu pHS32. Plazmid pHS32 rozszczepia sie Xbal, ekstrahuje fenolem, nastepnie chloroformem i wytraca etanolem. Nastepnie otrzymany ma¬ terial traktuje sie 1 pi polimerazy DNA I B. coli /fragment Kle nowa/ produkcji Boehrin- ger-Mannheim, w 30/U buforu polimerazy /50 mM fosforan potasowy pH 7,4, 7 mM MgCl2, 1 mM fi -merkaptoetanol/ zawierajacego 0,1 mM dTTP i 0,1 mM dCTP w ciagu 30 minut w temperaturze 0°C, a nastepnie w ciagu 2 godzin w temperaturze 37°C To traktowanie po¬ woduje, ze 2 z 4 nukleotydów staja sie komplementarne do wystajacego kotfca miejsca roz¬ szczepienia Ibal do uzupelnienia w: 5' CTAGA 5' CTAGA 3 T 3 TCT Dwa nukleotydy, dC i dT zostaja wlaczone dajac zakonczenie o dwóch wystajacych nukle- otydach 5*« Te linearna pozostalosc plazmidu pHS32 /po ekstrakcji fenolem, chloroformem oraz odzyskaniu w wodzie po straceniu etanolem/ rozszczepia sie BcoRI. Duzy fragment plazmidu oddziela sie od mniejszego fragmentu BcoRI - Ibal za pomoca PAGB i izoluje po elektroelucji. Ten fragment DNA otrzymany z pHS32 /0,2ig/ laczy sie w warunkach podob¬ nych do wyzej opisanych z fragmentem BcoRI - Taql operonu tryptofa nowego /-* 0,01 ug/, otrzymanym z pBRHtrp.W procesie laczenia fragmentu otrzymanego z pHS32 z fragmentem BooRI - Taql, jak opisano wyzej, laczy sie wystajacy koniec Taql z pozostalym wystajacym koncem Ibal, nawet jesli nie sa one calkowicie sparowane w sposób zgodny z zasada Watsona i Cricka: T CTAGA -TCTAGA AGC TCT -AGCTCT Czesc tej mieszaniny reakcyjnej, w której odbywalo sie laczenie, transformuje sie do komórek B. coli 294, poddaje sie obróbce cieplnej i wysiewa na plytki LB zawiera¬ jace ampicyline. Wybiera sie 24 kolonie, prowadzi ich hodowle w 3 ml podloza LB /Lu- ria-Bertani/ i izoluje sie plazmid. Stwierdzono, ze szesc z nich ma miejsce Ibal zre¬ generowane przez reparacje DNA katalizowana przez B. coli i replikacje: TCTAGA TCTAGA AGCTCT AGATCT Stwierdzono równiez, ze plazmidy te rozszczepiane sa zarówno przez BcoRI, jak i Hpal, dajao oczekiwane fragmenty restrykcyjne. Plazmidu oczyszczonego jako pTrp14, uzywa sie do ekspresji heterologicznych polipeptydów, jak opisano dalej.Plazmid pHGH 107 /Goeddel i wsp., Nature, 2B1, 544 /1979// zawiera gen ludzkiego hormonu wzrostu skladajacy sie z 23 kod o nów aminokwasów otrzymanych z fragmentów syn¬ tetycznego DNA i 163 kod onów aminokwasów otrzymanych z komplementarnego DNA otrzyma¬ nego za pomoca odwrotnej transkrypcji mRNA ludzkiego hormonu wzrostu. Gen ten, w któ¬ rym brak kodonów npre" sekwencji ludzkiego hormonu wzrostu, zawiera kod on inicjacji translacji ATG. Gen izoluje sie z 10/ug pHGH 107 przez dzialanie BcoRI, a nastepnie polimerazy DNA. I B. coli /fragment KIenowa/ i dTTp i dATP, jak opisano wyzej. Po ekstrakcji fenolem i chloroformem oraz wytraceniu etanolem, plazmid traktuje sie BamHI.Fragment zawierajacy gen ludzkiego hormonu wzrostu /HGH/ izoluje sie za pomoca PAGB, a nastepnie elektroelucji. Otrzymany fragment DNA zawiera równiez pierwsze 35014B 260 13 nukleotydów genu strukturalnego odpornosci na tetracykliny, ale brak w nim ukladu promotor-operator, tak wiec, gdy zostanie klonowany dla plazmidu wykazujacego eks¬ presje, mozna zlokalizowac plazmidy zawierajace insert przez przywrócenie odpornos¬ ci na tetracykline. Poniewaz EcoRI-koniec fragmentu uzupelniono metoda z uzyciem po- limerazy I /fragment Kle nowa/, fragment zawiera jeden wolny koniec i jeden lepki, co zapewnia prawidlowa orientacje po pózniejszym wlaczeniu do plazmidu wykazujacego eks¬ presje.Wytwarza sie nastepnie plazmid ekspresji pTrpH w celu przyjecia fragmentu zawie¬ rajacego gen HGH, otrzymanego jak opisano wyzej* Tak wiec trawi sie pTrp14 Ibal i powstale lepkie konce uzupelnia metoda z uzyciem polimerazy I /fragment Klenowa/ i dATP, dTTF, dGTP, dCTP. Po ekstrakcji fenolem i chloroformem, oraz wytraceniu etano¬ lem, powstaly DNA traktuje sie BamHI i otrzymany duzy fragment plazmidu izoluje sie za pomoca PAGB, a nastepnie elektroeluoji. Fragment otrzymany z pTrp14 zawiera jeden wolny koniec i jeden lepki, co pozwala na rekombinacje w prawidlowej orientaojl z fragmentem zawierajacym gen HGH, opisanym poprzednio.Fragment genu HGH i fragment A lba-BamHI pTrpH miesza sie 1 laczy w warunkach po¬ dobnych do opisanych wyzej. Uzupelnione konce Ibal i EcoRI laczy sie metoda laczenia wolnych konców w celu odtworzenia miejsca zarówno Xbal jak 1 EcoRI: Uzupelniony Xbal Uzupelniony EcoRI Inicjacja genu HGH TCTAG AATTCTATG TCTAGAATTCTATG + » AGATC TTAAGATAC AGATCTTAAGATAC Xbal EcoRI Konstrukcja ta przywraca równiez ekspresje genu opornosci na tetracykline. Ponie¬ waz plazmid pHGH 107 wykazuje ekspresje odpornosci na tetracykline od promotora w góre /promotor lac/, konstrukcja ta, oznaczona pHGH 207, pozwala na ekspresje genu opornosci na tetracykline pod kontrola ukladu promotor-operator tryptofanowy. Tak wiec mieszanine reakcyjna, z której odbywalo sie laczenie, transformuje sie E. ooli 294 i dokonuje selekcji kolonii na plytkach LB zawierajacyoh tetracykline w stezeniu 5 ug/ml# Plazmid pHGH 207 trawi sie EcoRI i odzyskuje sie za pomoca PAGE, a nastepnie elek¬ troeluoji, fragment o 300 b.p. zawierajacy promotor trp, operator i liderowe miejsce przylaczenia rybosomów trp, ale bez sekwencji inicjacji translacji ATG. Ten fragment DNA klonuje sie do miejsca EcoRI pLelF A. Plazmidy wykazujace ekspresje, zawierajace zmodyfikowany, jak wyzej, regulon trp /operon trp E. coli, z którego usunieto sekwen¬ cje oslabiajaca w celu mozliwego do kontrolowania podwyzszenia poziomu ekspresji/ mozna hodowac do ustalonego poziomu w podlozach odzywczych zawierajacych tryptofan w ilosciach niezbednych do represji ukladu promotor-operator, a nastepnie pozbawionych tryptofanu w celu depresji ukladu i mozliwosci ekspresji zadanego produktu.Bardziej szczególowo i w odniesieniu do fig. 6, trawi sie 250/Ug plazmidu pL31 Pstl i insert o 1000 b.p. izoluje sie za pomoca elektroforezy w 6% zelu poliakrylo- amidowym. Dokonuje sie elektroelucji z zelu okolo 40 /ig insertu i dzieli na 3 próbki do dalszego trawienia: a/ Trawi sie czesciowo 16 /ig próbke tego fragmentu 40 jednostkami Bg III w ciagu 45 minut w temperaturze 37°C i oczyszcza mieszanine reakcyjna w 6# zelu poliakrylo- amid owym. Odzyskuje sie okolo 2 yUg zadanego fragmentu o 670 b.p. b/ 8/ug insertu Pstl o 1000 b.p., jako inna próbke, poddaje sie dzialaniu AvaII i Bglll. Za pomoca elektroforezy w zelu odzyskuje sie 1 /ig wskazanego fragmentu o 150 b.p. c/ 16 /ag fragmentu o 1000 b.p. traktuje sie Sau3a i AvaII. Po elektroforezie w 10* zelu poliakryloamidowym odzyskuje sie okolo 0,25 /ag /10 pikomoli/ fragmentu o 34 b.p. Dwa wskazane oligodezoksynukleotydy, 5 '-dAATTCATGTGT /fragment 1/ i 5 '-dGATCA- CACATG /fragment 2/ syntezuje sie metoda fosfotriestrowa. Fragment 2 fosforyluje sie14 146 260 w nastepujacy sposób: 200 yul /^ 40 pikomoli/ /^ ** P/ ATP /Amershem, 5000 Ci/milimol/ przeprowadza sie w proszek i zawiesza w 30 yul 60 mM Tris-HCl /pH 890/9 10 mM MgClp, 15 mM p-merkaptoetanolu zawierajacym 100 pikomoli fragmentu DNA i 2 jednostki kinazy polinukleotydowej T 4« Po 15 minutach inokulacji w temperaturze 37°C dodaje sie 1 ul 10 mM ATP i prowadzi reakcje w ciagu dalszych 15 minut. Nastepnie mieszanine reakcyj¬ na ogrzewa sie w temperaturze 70°C w ciagu 15 minut, miesza z 100 pikomolami fragmen¬ tu 1 5 *-0H 1 10 pikomolami fragmentu Sau3a - AvaII o 34 b.p. Laczenie przeprowadza sie w ciagu 5 godzin w temperaturze 4°C w 50 yul 20 mM Tris-HCl /pH 7,5/, 10 mM MgCl2, 10 mM dwutiotreitolu, 0,5 mM ATP, w obecnosci 10 jednostek ligazy DNA T 4* Mieszanine poddaje sie elektroforezie w 6% zeli poliakryloamidowym i odzyskuje produkt o 45 b.p. za pomoca elektroelucji. Okolo 30 ng /1 pikomol/ produktu o 45 b.p. miesza sie z 0,5 ug /5 pikomoli/ fragmentu AvaII-Bg1II o 150 b.p. i 1yug /2 pikomole/ fragmentu Bg1II - PetI o670 b.p. Laczenie przeprowadza sie w temperaturze 20°C w ciagu 16 godzin z uzy¬ ciem 20 jednostek ligazy DNA T4. Ligeze inaktywuje sie przez ogrzewanie do temperatu¬ ry 65°C w ciagu 10 minut. Nastepnie mieszanine trawi sie EcoRl 1 Pstl w celu wyelimi¬ nowania polimerów genu. Mieszanine oczyszcza sie z zastosowaniem 6% PAGE. Izoluje sie 20 ng /0,04 pikomola/ produktu o 865 b.p* Polowe tej ilosci /10 ng/ wlacza sie do pBR322 /0t3 ug/ miedzy miejsca EcoRI a Patl. Transformacja E. coli 294 daje 70 trans- formantów odpornych na tetracykline, wrazliwyoh na ampicyline.Plazmidowy DNA izolowany z 18 tych transformantów trawi sie EcoRI i Pstl. 16 z tych 16 plazmidów mialo fragment EcoRI - Pstl o dlugosci 865 b.p. Jedenyug jednego z nich, pLelF A1 trawi sie EcoRI i laczy z 0,1 yug fragmentu EcoRI o 300 b.p. zawiera¬ jacego promotor trp i liderowe miejsca przylaczania rybosomów trp, otrzymanego jak opisano wyzej. Transformanty zawierajace promotor trp identyfikuje sie z uzyciem prób¬ ko ki J P-trp w polaczeniu z metoda screeningu kolonii Grundstelna-Hognessa. Asymetrycz¬ nie umieszczone we fragmencie trp miejsce lbaI pozwala na okreslenie rekombinantów, w któryoh promotor trp zorientowany byl w kierunku genu LelF A. 3. Aktywnosó LelF A in vitro i in vivo. Ekstrakty przygotowuje sie do badania IF w nastepujacy sposób. Prowadzi sie 1 ml hodowle w podlozu L zawierajacym tetracykllne w stezeniu 5 ug/ml do wartosci Accq okolo 190 i rozoiencza do objetosci 25 ml podlozem M9 zawierajacym tetracykllne w stezeniu 5yUg/ml. Zbiera sie przez odwirowanie 10 ml próbki, gdy Accq osiagnie 1,0 i osad komórek zawiesza w 1 ml 15& sacharozy, 50 mM Tris-HCl /pH 6,0/, 50 mM EDTA. Dodaje sie 1 mg llzozymu i po 5 minutach inkubacji w temperaturze 0°C komórki rozbija sie przez nadzwiekowienie. Próbki odwirowuje sie w ciagu 10 minut /15 000 obrotów /minute/ i okresla sie aktywnosó LelF w supernantantach w porównaniu ze standardowymi LelF na podstawie zahamowania efektu cytopatycznego /CPE/.W celu okreslenia ilosci czasteczek IF na komórke uzywa sie LelF o aktywnosoi wlasciwej 4 x 10 jednostek/mg.Jak to uwidoczniono w tablicy 1, klony pLelF A trp 25, do których promotor trp zos¬ tal wlaczony w zadanej orientacji, wykazuja wysoki poziom aktywnosci /tak wysoki, jak 2,5 x 10 jednostek/litr/. Jak to uwidoczniono w tablicy 2, IF wytworzony przez E. coli K-12 szczep 294/pLeIF A trp 25 zachowuje sie podobnie do oryginalnego ludzkiego LelF.Jest on stabilny w pH 2 i ulega neutralizacji przez królicze przeciwciala przeciw ludz¬ kim leukocytom. Interferon wykazuje ciezar czasteczkowy okolo 20 000.Skuteczne dzialanie interferonu in vivo wymaga obecnosci makrofagów i naturalnych komórek zabijajacych /NK/. Mechanizm dzialania in vivo obejmuje stymulacje tych komórek.Tak wiec, pozostaje mozliwe, ze interferon tworzony przez E. coli 294/pLeIF A 25, wyka¬ zujacy aktywnosc w badaniu w hodowlach komórkowych, nie wykazywalby aktywnosci w orga¬ nizmie zakazonych zwierzat. Ponadto, przeciwwlrusowa aktywnosó LelF A wytworzonego przez bakterie, nie gllkozylowane go, moze sie róznic od aktywnosci LelF otrzymanego z ludzkich leukocytów "buffy coat". Tak wiec, porównuje sie aktywnosc biologiczna wytwo¬ rzonego przez bakterie LelF A /2% czystosci/ z aktywnoscia LelF "buffy coat" /&& czys¬ tosci/ w smiertelnym zakazeniu wirusem zakalenia mózgu i miesnia sercowego u malp seimiri /tablica 3/.148 260 15 Tablica 1 Aktywnosc interferonu w ekstraktach E« coli B. ooli K-12 szczep 294 transformowany | przez I pLelP A trp 25 pLelP A trp 25 Gestosc komórek /komórki/ml/ 3,5 x 10b 1,8 x 109 | Aktywnosc IP jednostki/ml hodowli 36,000 250,000 Ilosc czasteczek LelP na komórke 9,000 j 12,000 Tablica 2 Porównanie aktywnosci ekstraktów*E. coli 294/pLeIP A 25 &e standardem LelP* I ¦ ekstrakt 294/pLeIP A trp 25 i standard LelP Aktywnosc interferonu I /jednostki/ml/ ] nie poddany obróboe 500 500 I pH 2 500 500 królicze przeciw- | ciala przeciw leuko¬ cytom ludzkim <10 I <10 T W powyzszej tablicy 2 uzyto nastepujacych oznaczen: x Ekstrakt E. coli 294/pLeIP i trp 25 o aktywnosci 250 000 jednostek/ml opissny w tablicy 1 rozciencza sie 500 x minimalnym podlozem podstawowym, co daje aktywnosc wlasciwa 500 jednostek/ml. Standard interferonu leukocytów /Wadley Institute/, uprzed¬ nio wymiareczkowany wobeo standardu interferonu leukocytów NIH, równiez rozciencza sie do koncowego stezenia 500 jednostek/ml. Próbki o objetosci 1 ml doprowadza sie do pH 2 za pomoca 1 N HC1, inkubuje w temperaturze 4°C w ciagu 52 godzin i zobojetnia przez dodanie NaOH, po czym okresla aktywnosc interferonu w zwyklym badaniu zahamowa¬ nia CPE. Próbki o objetosci 25yul o aktywnosci 500 jednostek/ml /nie poddane obrób¬ ce/ inkubuje sie z 25yul roztworu króliczych przeciwcial leukocytom ludzkim w tempe¬ raturze 37°C w ciagu 60 minut, wiruje przy 12 000 x g przez 5 minut i bada euperna- tant.Tablica 3 Przeciwwirueowe dzialanie róznych preparatów LelP przeciw zakazeniu wirusem EMC u malp saimiri Czynnik I dzialajacy j Kontrola /bialka bakteryjne/ i Bakteryjny LelP A Standard LelP I Ilosc zwierzat przezywajacych 0/3 3/3 3/3 I Surowicze czynniki tworzace lysinki, jednostki na ml dzien 2 10 0 3 0 u 0 0 0 0 0 0 • i —H [dzien 3 [3x10^ °y 0 0 0 0 0 0 dzien 4 1 j 10= 1,200 0. 0 0 0 0 0 0 3,4x104|16 148 260 Wszystkie malpy sa samcami /srednia waga 713 g/ i nie wykazuja przed zakazeniem przeciwcial przeciw wirusowi EMC. Malpy zakaza sie domiesniowo 100 x LD50 wirusa EMC /oznaczonymi na myszach/. Malpy kontrolne padly po 134, 158 i 164 godzinach od zaka¬ zenia. Leczenia interferonem /10 jednostek/ dokonuje sie przez dozylne podawanie w godzinach: - 4, ? 2, 23, 29, 48, 72, 168 i 240 w stosunku do czasu zakazenia. Bakte¬ ryjny interferon leukocytów jest frakcja otrzymana przy prowadzeniu chromatografii kolumnowej lizatu E. coli 294/pLeIF A 25 o aktywnosci wlasciwej 7,4 x 10 jednostek/ mg bialka. Kontrolne bialka bakteryjne sa równowazna frakcja otrzymana przy prowadze¬ niu chromatografii kolumnowej lizatu E. ooll 294/pBR322 przy dwukrotnym zageszczeniu bialka calkowitego. Standardem interferonu leukocytów jest interferon indukowany wi¬ rusem Sendai, z normalnych komórek ludzkich "buffy coat", oczyszczony chromatograficz¬ nie do aktywnosci wlasciwej 32 z 10 jednostek/mg bialka.Malpy kontrolne wykazywaly postepujacy letarg, utrate równowagi, porazenie wiotkie tylnych konczyn i zaburzenia w równowadze plynów zwiazane z oczami, zaczynajace sie osiem godzin przed smiercia. Malpy leczone interferonem nie wykazywaly zadnego z tyoh nienormalnych objawów, pozostawaly aktywne przez caly czas i nie wykazywaly wirem!i.Jedyna malpa w grupie kontrolnej, u której nie powstala w ciagu 4 dni wiremia, pad¬ la ostatnia /164 godziny po zakazeniu/. Wykazywala ona jednak wysokie miana wirusa w sercu i mózgu post mortem. U malp leczonych interferonem nie powstawaly przeciwciala przeciw wirusowi EMC, jak to oznaczono 14 i 21 dnia po zakazeniu. Wyniki te wykazuja, ze przeciwwirusowe dzialanie preparatów LelF u zakazonych zwierzat moze byc przypisa¬ na jedynie interferonowi, poniewaz bialka zanieczyszczajace sa calkowicie rózne w pre¬ paratach bakteryjnych i "buffy coat". Wyniki te wskazuja poza tym na to, ze glikozy- laoja nie jest wymagana jesli chodzi o aktywnosc przec iwwirusowa LelF A in 7ivo.Przyklad VIII. Izolowanie cDNA dalszych interferonów leukocytów.Z plazmidu zawierajacego calkowicie scharakteryzowany cDNA LelF A wycina sie DNA 32 za pomoca Pstl, izoluje elektroforetycznie i znakuje P. Powstalego znaczonego pro¬ mieniotwórczo DNA uzywa sie jako próbki do screeningu dodatkowych transformantów E. coli 294, otrzymanych w ten sam sposób jak opisano w czesci C, metoda screeningu kolonii in situ Grunsteina i Hognessa /patrz wyzej/. Izoluje sie kolonie hybrydyzuja¬ ce z próbka w róznych ilosciach. Izoluje sie plazmidowy DNA z tych kolonii oraz dzie¬ sieciu hybrydyzujacyoh kolonii okreslonych w czesci G, jak wyzej, przez przeciecie Pstl i charakteryzuje trzema róznymi metodami. Po pierwsze, te fragmenty Pstl charak¬ teryzuje sie przez sposób, w jaki trawione sa one przez endonukleazy restrykcyjne, z uzyciem enzymów Bglll, PvuII i EcoRI. Analiza pozwala na klasyfikacje co najmniej os¬ miu róznych typów /LelF A, LelF B, LelF C, LelF D, LelF E, LelF F, LelF G i LelF H/ przedstawionych na fig. 5, gdzie rózne naciecia restrykcyjne przedstawione sa /w przy¬ blizeniu/ wzgledem dodatkowej znanej presekwencji 1 sekwencji kodujacej LelF A. Uwaza sie, ze jeden z nich, LelF D, jest identyczny z tym, o którym doniesli Naga ta i wsp., Nature, 284, 316-320 /1980/.Po drugie, rózne DNA bada sie metoda selekcji hybrydyzacyjnej, opisana przez Cle- velanda 1 wsp., Celi, 20, 95-105 /1980/, pod wzgledem zdolnosci do wybiórczego usu¬ wania mRNA LelF z RNA komórek KG-1 zawierajacego poll A. LelF A, B, CIF okazaly sie w tym badaniu pozytywne.Po trzecie, dalsze fragmenty Pstl wprowadza sie do plazmidu wykazujacego ekspresje, transformuje tym plazmidem E. ooll 294 1 doprowadza do ekspresji fragmentów. Produkty ekspresji, 00 do których uwaza sie, ze zawieraja pre interferony, byly wszystkie pozy¬ tywne w badaniu CPE aktywnosci interferonu, aczkolwiek w przypadku fragmentów LelF F aktywnosc byla bliska granicy. Oprócz powyzszych badan, wszystkie trzy LelF poddano badaniu sekwenoji.Przyklad IX. Bezposrednia ekspresja drugiego dojrzalego interferonu leuko¬ cytów /LelF B/.Sekwencja izolowanego fragmentu zawierajacego gen dojrzalego LelF B wskazuje na pierwsze 14 nukleotydów identycznych w typie A i B. Zgodnie z tym, izoluje sie frag¬ ment genu pLelF A25 zawierajacy uklad promotor-operator trp, miejsce przylaczenia ry-148 260 19 LelF H. Calkowity gen LelF H mozna uksztaltowac w celu ekspresji dojrzalego inter¬ feronu leukocytów w nastepujacy sposób: 1. Plazmid pLelF H poddaje sie trawieniu Haell i Rsal z izolowaniem fragmentu o 816 b.p. rozciagajacego sie od aminokwasu 10 sygnalowego peptydu do nie kodujaoego regionu 3. 2. Fragment denaturuje sie i poddaje syntezie reperacyjnej z uzyciem polimerazy DNA I /fragment Klenowa/ /Klenow i wsp., Proc* Natl. Acad. Sci. USA, 65, 168 /1970/, stosujac syntetyczny primer dezoksynukleotydowy 5*-dATG TGT AAT CTG TCT. 3. Powstaly produkt rozszczepia sie Sau3a i izoluje fragment o 452 b.p. reprezen¬ tujacy aminokwasy 1-150. 4. Przez trawienie pLelF H Sau3a i Pstl i izolowanie powstajacego fragmentu o 500 b.p. uzyskuje sie gen kodujacy aminokwasy od 150 do konca kodujacej sekwencji. 5. Fragmenty izolowane w stadium 3/ i 4/ laczy sie z utworzeniem fragmentu: 1 166 met cys asp stop ATG TGT GAT TGA PstI Sau3a kodujacego 166 aminokwasów LelF H. 6. pLelF A trp 25 trawi sie lba I, laczy wolne konce za pomoca polimerazy DNA i tra¬ wi produkt Pstl. Powstajacy duzy fragment mozna wyizolowac i polaczyc z produktem otrzymanym w stadium /5/ z utworzeniem plazmidu wykazujacego ekspresje, zdolnego, po transformacji E. ooli K-12 szczep 294 lub innej bakterii-gospodarze, do ekspresji dojrzalego LelF H.LelF I. Poddaje sie screeningowl faze Charon 4A zbioru rekomblnantów ludzkiego ge¬ nomu skonstruowanego przez Lawna i wsp. Celi, 15, 1157 /1978/, pod wzgledem genów in¬ terferonu leukocytów metoda opisana przez Lawna i wsp. /jak wyzej/ i Maniatisa i wsp.Celi, 15, 687 /1978/. Promieniotwórcza próbke odnoszaca sie do LelF otrzymana z cDNA klonu LelF A stosuje sie do screeningu okolo 500 000 lysinek. Za pomoca tego acreenin¬ gu otrzymano 6 klonów z genomem LelF. Po powtórnym screeningu i oczyszczeniu materialu z lysinek, jeden z tych klonów, HLeIF2, wybrano do dalszych badan.Przy uzyciu opisanych wyzej metod, mozna uzyc innych próbek do korzystnego izolowa¬ nia dodatkowych klonów LelF z ludzkiego genomu. Moga byc one, z kolei, zastosowane do wytwarzania sposobem wedlug wynalazku dodatkowych bialek interferonowych leukocytów. 1. Dokonuje sie podklonowania fragmentu EcoRI o 2000 b.p. klonu HLeIF2 do miejsca EcoRI w pBR325. Powstajacy plazmid LelF rozszczepia sie EcoRI i izoluje fragment o 2000 b.p. Dezoksyoligonukleotyd aAATTCTGCAG /konwertor EcoRI-Pstl/ laczy sie z frag¬ mentem EcoRI o 2000 b.p. i powstajacy produkt rozszczepia Pstl z otrzymaniem fragmen¬ tu o 2000 b.p* zawierajacego konce Pst I. Rozszczepia sie go Sau96 i izoluje fragment, który ma jeden koniec Pstl a jeden Sau 96, o 1100 b.p. 2. Plazmid pLelF C trp 35 trawi sie Pstl i Xbal. Izoluje sie duzy fragment. 3. Maly fragment Xbal-Pst I z pLelF C trp 35 trawi sie Xbal i Sau 96. Izoluje sie fragment Xbal-Sau 96 o 40 b.p.A* Fragmenty izolowane w stadiach /1/, /2/ i /3/ laczy sie z utworzeniem wykazuja¬ cego ekspresje plazmidu pLelF I trp 1.LelF J. 1. Plazmid pLelF J zawiera fragment Hindlll o 3*8 kilozasad DNA genomu ludz¬ kiego, w którego sklad wchodzi sekwencja genu LelF J. Z plazmidu tego izoluje sie frag¬ ment Ddel-Rsal o 760 b.p. 2. Plazmid pLelF B trp 7 rozszczepia sie Hindlll i Ddel 1 izoluje sie fragment Hlnd III-Ddel o 340 b.p. 3. Plazmid rozszczepia sie Pst I, konce przeksztalca w wolne za pomoca polimerazy DNAI /fragment Klenowa/, a nastepnie trawi Hindlll. Izoluje sie duzy fragment o okolo 3600 b.p. 4. Fragmenty izolowane w stadiach /1/, /2/ i /3/ laczy sie z utworzeniem wykazuja- oego ekspresje plazmidu pLelF J trp 1.20 148 260 Przyklad XI • Oczyszczanie.Zawartosc interferonu leukocytów w ekstraktach bakteryjnych mozna podwyzszyc, wy¬ konujac kolejno: 1, Wytracenie polietylenoimina, po którym wiekszosc bialek komórkowych, w tym in¬ terferon, pozostaje w supernatancie • 2* Frakcjonowanie siarczanem amonu, po którym interferon wytraca sie z roztworu przy 55* nasyceniu siarczanem amonowym. 3. Zawieszenie osadu wytraconego aiaroza nem amonowym o 0,06 M fosforanie potaso¬ wym, 10 mM Tris-HCl, pH 7,2 i poddanie dializie wobec 25 mM Tris-HCl o pH 7,9 /ak¬ tywnosc interferonu stwierdza sie w roztworze/. 4. Przeprowadzenie chromatografii supernantantu otrzymanego w sposób jak opisano wyzej na kolumnie z DEAE celuloza /eluujac gradientem liniowym od 0 do 0,2 M NaCl w 25 mM Tris-HCl, pH 8,5/. 5. Adsorpcje na Cibachrome Blue-Agarose lub hydroksyapatycie i elucje, odpowiednio 1,5 M KC1 lub 0,2 M roztworem fosforanu /fakultatywnie/. 6* Ustalenie ciezaru czasteczkowego na kolumnie zelu Sephadex®G-75. 7. Przeprowadzenie chromatografii kat io nowymiennej na CM-celulozie w 25 mM oota- nie amonowym w pH 5,0 z uzyciem do rozwijania gradientu octanu amonowego /do 0,2 M octanu amonowego/* Powyzszy sposób pozwala na uzyskanie materialu o czystosci 95*« Material mozna równiez oczyszczac za pomoca chromatografii typu nsize exclusionM, wysokocisnieniowej chromatografii cieczowej z odwróconymi fazami /RP-8/ lub chromato¬ grafii powinowactwa na unieruchomionych przeciwcialach przeciw interferonowi* Alternatywnie, material otrzymany w etapie /4/ mozna naniesc na kolumne z monoklo- nalnymi przeciwcialami, otrzymanymi w sposób opisany przez Milsteina, Scientifio Ame¬ rican, 243, 66 /19B0/ z elucja 0,2 M kwasem octowym, 0,1* Triton i 15 M NaCl.W alternatywnej, korzystnej postaci sposobu wedlug wynalazku, interferon leukocy¬ tów wytworzony sposobem wedlug wynalazku mozna oczyscic w nastepujacych operacjach: 1. Zamrozony osad komórek zawierajacych interferon leukocytów, który ulegl ekspre¬ sji, rozbija sie recznie przy uzyciu odpowiedniego urzadzenia do rozcierania. Czescio¬ wo rozmrozone komórki zawiesza sie w 4 objetosciach buforu A, zawierajacego 1 M Tria, o wartosci pH nastawionej na 7,5-8, 10* /wagowe objetosciowych/ sacharoze, 0,2 mM NaCl, 5 mMBDTA, 0,1 mM PMST i 10-100 mM MgCl2. Temperature zawiesiny doprowadza sie do okolo 4°C c Zawiesine przeprowadza sie przez homogenizator pod cisnieniem 413,685 • 10^ Pa, a nastepnie przeprowadza sie drugi raz pod cisnieniem mniejszym niz 67,948 • 10^ Pa.Plan wyplywajacy z homogenizatora, zarówno po pierwszym, jak i po drugim przejsciu zbiera sie w lazni z lodem. 2. Do homogenatu dodaje sie powoli polietylenoimine do stezenia okolo 0,35* i od¬ stawia sie na okolo 30 minut* Ciala stale usuwa sie za pomoca wirowania lub saczenia.W operacji tej trzeba kontrolowac temperature lub przeprowadzic proces wystarczajaco szybko tak, aby utrzymywac supernatant /przesacz/ w temperaturze nizszej niz 10°C.Supernatant /przesacz/ zateza sie do okolo 1/10 objetosoi wyjsciowej za pomoca ultra- filtraoji. Material w postaci czastek lub zamglenia usuwa sie za pomoca odpowiedniego saczka, takiego jak membrana miliporowata* 3* Sklarowany roztwór nanosi sie bezposrednio na kolumne z przeciwcialami monoklo- nalnymi przy przeplywie 5-8 cm/godz. /np. 25-40 ml/godz. przez kolumne o srednicy -2,6 om/* Po naniesieniu, kolumne przemywa sie okolo 10 objetosciami, w stosunku do objetos¬ oi kolumny, 25 mM Tris-HCl pH 7,5-8,5 zawierajacym 0,5 M NaCl i substancje powierzchnio¬ wo czynna, taka jak 0,2* Triton X 100 lub jego odpowiednik* Po przemyciu, kolumne prze¬ plukuje sie okolo 10 objetosciami, w stosunku do objetosci kolumny, roztworu zawiera¬ jacego 0,15 M NaCl i substancje powierzchniowo czynna, taka jak 0,1* Triton X 100 lub jego odpowiednik* Blucje prowadzi sie 0,2 M kwasem octowym zawierajacym substancje po¬ wierzchniowo czynna, taka jak 0,1* Triton X 100 lub jego odpowiednik* Frakcje z kolumny148 260 21 z monoklonalnymi przeciwolalami, zawierajace szczyt bialkowy /oznaczony na podstawie absorpcji UV lub w innych dogodnych badaniaoh/ laczy sie i doprowadza ich pH do okolo 4,5 za pomoca 1 N NaOH lub 1,0 M Tris w postaci zasady. 4. Polaczony szczyt interferonowy nanosi sie na wymiennik kationowy, taki jak celu¬ loza Whatman CM52, lub Jej odpowiednik, zrównowazony wlasciwym buforem, takim jak 50 mM octan amonowy o pH 4,5* Po naniesieniu kolumne przemywa sie buforem, którym byly zrównowazone, az absorbancja UV wycieku osiagnie plateau tak, ze z kolumny eluuje sie niewiele dodatkowyoh bialek* Nastepnie prowadzi sie elucje mieszanina 25 mM octa¬ nu amonowego 0,12 M chlorku sodowego lub kombinacje optymalizujaca odzyskanie inter¬ feronu 1 uzyskuje sie zlofilizowana substancje o zadowalajacym wygladzie i rozpusz¬ czalnosci.Monoklonalne przeciwciala uzywane w konkretnym zastosowaniu opisanym wyzej mozna otrzymac sposobami opisanymi przez Stache lina i wsp., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 78, 1848-1852 /1981/. Monoklonalne przeciwciala oczyszcza sie i wiaze konwencjonalnie z Affige1-10, jak opisano w dalszej czesci opisu* Przyklad XII. Otrzymywanie i oczyszczanie monoklonalnych przeciwcial z ply¬ nu puchlinowego.Kazda z 5 myszy Balb/c, sarnio, szczepi sie komórkami hybridoma ze srodkowej, loga¬ rytmicznej fazy wzrostu, w ilosci 10 x 10 . Okolo 5 1 10 zywotnych komórek otrzyma¬ nych od myszy tworzacyoh plyn wszozepia sie do otrzewnej kazdej z 10 lub wiekszej ilo¬ sci myszy. Zbieranie plynu puchlinowego od kazdej myszy powtarza sie 2-4-krotnie.Przenoszenie komórek od jednej grupy myszy do nastepnej ze zbieraniem plynu mozna pow¬ tarzac do trzech razy. Laczy sie plyn puchlinowy od myszy z kazdego przeniesienia.Komórki i debris usuwa sie z plynu puchlinowego przez wirowanie przy niskich obro¬ tach /500-100 x g/ w ciagu 15 minut. Nastepnie wirowanie prowadzi sie w ciagu 90 mi¬ nut przy 18 000 obrotach/minute. Supernatant zamraza sie i przechowuje w temperaturze -20°C. Po rozmrozeniu, dodatkowa fibryne 1 material w postaci czastek odwirowuje w ciagu 90 minut przy 35 000 obrotach/minute. W partiach plynu puchlinowego z kazdego przeniesienia bada sie aktywnosc swoistego przeciwciala metoda wiazania sie z faza stala /Stachelln i wsp. jak wyzej/ i puluje, jesli jest ona dostateczna.Stezenie bialka w spulowanych roztworach oznacza sie przez przyblizenie przyjmuja¬ ce, ze 1 mg bialka odpowiada absorbancji 1,2 w 280 nm w kuwecie o drodze optycznej 1,0 cm. Plyny puchlinowe o wysokim poziomie przeciwcial zawieraja 30-35 mg bialka/ml.Jest to odpowiednik 4-7 mg swoistego przeciwciala/ml. Plyn rozciencza sie PBS /0,01 M fosforan sodowy, pH 7,3, 0,15 M NaCl/ do stezenia bialka 10-12 mg/ml.Po kazdych 100 ml rozcienczonego roztworu dodaje sie powoli, przy energicznym mie¬ szaniu, w temperaturze 0°C, 90 ml roztworu siarczanu amonowego nasyconego w tempera¬ turze pokojowej. Zawiesine przetrzymuje sie w lodzie w ciagu 40-60 minut i wiruje przez 15 minut przy 10 000 obrotach/minute w temperaturze 4°C. SUpernatant dekantuje sie i dobrze odciaga. Osad bialkowy rozpuszcza sie w 0,02 M Tris-HCl /pH 7,9/ /0,04 M NaCl/bufor 1/. Roztwór bialkowy dializuje sie w ciagu 16-18 godzin w tempera¬ turze pokojowej wobeo 100 objetosci buforu I, z przynajmniej jedna zmiana buforu.Dializowany roztwór wiruje sie przy 15 000 obróta oh/minute w ciagu 10 minut w celu usuniecia nie rozpuszczonego materialu. Odzyskuje sie okolo 30-35& wyjsciowej ilosci bialka calkowitego w plynie puohlinowym /oznaczenie przez absorpcje w 280 nm/.Roztwór zawierajacy 30-40 mg bialka/ml nanosi sie na kolumne DEAB-celulozy zrówno¬ wazonej buforem I* Stosuje sie 00 najmniej 100 ml objetosci zloza kolumny na gram na¬ niesionego bialka. Przeciwcialo eluuje sie z kolumny linearnym gradientem NaCl zawie¬ rajacym 0,02 M Tris-HCl, o pH 7,9 i od 0,04 M do 0,5 M NaCl. Polaczone frakcje szczy¬ towe wyeluowane miedzy 0,06 a 0,1 M NaCl zateza sie przez wytracenie taka sama ilos¬ cia roztworu siarczanu amonowego nasyconego w temperaturze pokojowej 1 odwirowanie.Osad bialkowy rozpuszcza sie w 0,2 M NaHCO^ /pH 8,0/ /0,3 M NaCl /bufor II/, a nastep¬ nie dializuje wobeo trzech zmian tego samego buforu w temperaturze pokojowej.22 148 260 Dializowane roztwory odwirowuje sie przy 20 000 x g w ciagu 15 minut w celu usuniecia nierozpuszczalnego materialu. Stezenie bialka doprowadza sie za pomoca buforu II do 20-25 mg/ml.Przyklad XIII* Otrzymywanie immunoadsorbentów Affigel-10 /produkcji Bio- rad Laboratories, Richmond, Kalifornia/ przemywa sie na saczku ze szkla spiekanego trzykrotnie izopropanolem o temperaturze lodu, a nastepnie woda destylowana o tempe¬ raturze lodu. Zel w postaci papki /50$ w zimnej wodzie/ przenosi sie do plastykowych probówek i osadza przez krótkie wirowanie. Supernatant odciags sie. Upakowany zel miesza sie z taka sama objetoscia roztworu oczyszczonego przeciwciala i poddaje dzia¬ laniu obrotów "end-oYer-end" w temperaturze 4°C w ciagu 5 godzin.Po zajsciu reakcji zel odwirowuje sie i przemywa 2 razy buforem III /0,1 M NaHCO-/ 0,15 M NaCl/ w celu usuniecia nie zwiazanego przeciwciala. Oznaczenie bialka w pola¬ czonych przemywkach ujawnia, ze ponad 90$ przeciwciala zostalo zwiazane z zelem.W celu zablokowania miejsc, które nie przereagowaly, zel miesza sie z taka sama objetoscia 0,1 M chlorowodorku etanoloaminy /pH 8/ i poddaje dzialaniu obrotów "end- -over-end" w temperaturze pokojowej w ciagu 60 minut. Zel w postaci papki przemywa sie PBS w celu uwolnienia od substratów reakcji i przechowuje w PBS w obecnosci 0,0256 /wagowo objetosciowych/ azydku sodowego w temperaturze 4°C.Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich zawierajacego 165-166 aminokwasów lub, w przypadku gdy do N-iconca pierwszego aminokwasu tego inter¬ feronu przylaczona jest metionina, zawierajacego 166-167 aminokwasów, i o czesciowej sekwencji Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Gla-Ile-Met-Arg-Ser,jak wskazano w sekwen¬ cjach na fig. 4 lub fig. 9 w pozycji od 139 do 151» przez powodowanie wzrostu hodowli drobnoustrojów, transformowanych zdolnym do replikacji drobnoustrojowym nosnikiem eks¬ presji, i ekspresje interferonu, znamienny tymTze konstruuje sie wektor E. coli zawierajacy promotor trp E. coli, operator i liderowe miejsce przylaczenia rybosomów trp, izoluje sie fragment DNA kodujacy dojrzaly interferon leukocytów ludz¬ kich, i dokonuje sie insercji tego fragmentu DNA interferonu leukocytów ludzkich za promotorem trp E. coli, operatorem i liderowym miejscem przylaczenia rybosomów trp, otrzymanym wektorem ekspresji E. coli zdolnym do ekspresji dojrzalego interferonu leu¬ kocytów ludzkich, transformuje sie w znany sposób szczep E. coli 1 powoduje sie wzrost transformowanego drobnoustroju w pozywce zawierajacej dodatek tryptofanu w ilosci wys¬ tarczajacej do represji ukladu promotor trp - operator, obniza sie poziom tryptofanu w pozywoe az do indukcji transformowanego drobnoustroju do wytwarzania interferonu, po czym transformowany drobnoustrój poddaje sie lizie przez dodanie llzozymu i nastep¬ na sonifikacje, i wreszcie odzyskuje sie interferon w znany sposób, zwlaszcza metoda stracania, za pomoca chromatografii typu "size exclusion", wysokocisnieniowej chroma¬ tografii cieczowej z odwrócona faza /RF-8/ lub chromatografii powinowactwa na unieru¬ chomionych przeciwcialach przeciw interferonowi. 2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA interferonu leuko¬ cytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspre¬ sji dojrzalego interferonu A leukocytów ludzkich /LelP A/. 3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA inter¬ feronu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobnoustro¬ jowej ekspresji dojrzalego interferonu B leukocytów ludzkich /LelP B/. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA inter¬ feronu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobnoustro¬ jowej ekspresji dojrzalego interferonu C leukocytów ludzkich /LelP C/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 4.148 260 23 5* Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ge jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu D leukocytów ludzkich /LelF D/f o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 4» 6. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu P leukocytów ludzkich /LelF F/t o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 4. 7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny t y m, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu H leukocytów ludzkich /LelF H/, o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej.na fig* 4. 8* Sposób wedlug zastrz* 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania ekspre¬ sji dojrzalego interferonu I leukocytów ludzkich /LelF I/, o^sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 9. 9. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu J leukocytów ludzkich /LelF J/, o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 9.Peptyd trypsynowy (T -1) Peptyd trypsynowy (T-13) Bialko Ala-Glu- Ile -Met-Arg — His-Glu-Met-Ile-Gln— mRNA 5' GCN GAA AUC AUG A(3N 5' CA GA AUG AUC CA„ GUC UG UG fc O Komplemen- 3* CTT TAG TAC GC (T-1A) 3' GTA CTT TAC TA (T-13A) tarne primery T DNA ___c (T.1B) __G (T.13B) T_(T.1C) c (T-13C) Rg.1 —-C T-(T-ID) — G--C---(T-13D)148 260 Próbka 32P- T- IC 1 ^ 4 5 C 7 8 9.101112131415l6l7j8l92p2l22232425 26 272829303132333435363738 Próbka *P - T - 13C 12 3 4C 6 TA 91011121314156171819 252627282930313233343536373839 4"*P^ Rg.2f % X0TJTrr9TT0XaLD90X0OXT0OX0Y00^^ H £I«f X0VXTrramU*HOY0X00XYX0X0Y!^^ O #!•! X0VXTTVf)TVfXI0X0O0XX0XT0aX0TOeU0XTr!XVMO0C^ Z *H xotx¥ y *fflTPXoxoooxooxTooxoYoai^vrf^ a *r<^ X0TXTrf!*TYaLaKO0XXCXY00X0Y^ a *XTT XOTXrfrO0*t)XtI3DPX0OXTO3X0TO0TfttTV^ O *I«T XOTXTTTOOTOXOd^OOXOaXTDOXOTD^ fl *I«T X0YJTYYWmXIM0«X0XXYD0X0TOOT^ T *I^ 0%% 0*% 00* 08C 09€ MXXJ3YfwaYaYX3XXTrrr?fnrxoo^ h ^i^t 0TXXJ3TTPX3T0TX0XXT¥TOTtTXCXX0T0T0TC^TO0OXX0VX0OX0XT0X0VO0rTV0V0OV0XXaXOXVT0XXD0TOVO0T0aXTaiTgnrfXT00 O £11 OYYXXOYTfXlOTOMXIXYYYYY3TXOOXOOOT0YOW 4 *I^ {^jjjoTroiwyTXOoxfyvovovxxxxoooTOTmTooaLiOTXTPxoxT * sm 3YXCXOYYTOOTOOIOXXTTrOY0TXOOXOOTf^ a *T*1 0YXXXDYTOXOT0OXXXXTYYTTOTXOOXODeTO 3 #J*q 0YDXX0tYDiXT«*X0XXTT0XTDYXaXX000Y^ O «**T 0TX0X0TTOX0T0TXOXLyffOWfX00X300TOT0XYOOOLX0fXiK)X0XT0X0VO0VVT0 T *X^ oirC orC ooc 09? 09Z XOOXOXOXOXTODOTTOXOt)¥ VfP10aXXt»VP0TT09OXTt)XXXTVDDVO0Y0 000XXXYYMXX0TOXVDYOVDYOCrrmi30OX00X^^ H JT^T X00X0X0X0XT0C)0YTaX0f)0TTOTO0XXOT00TT00OXTfJJLXOV XOOXXXVDOXXXOTOXTD O JI*'! xooxoxox3XToooYYoxoooYwrooxxD^^ DoooxxTooixxoTOXTOTOvovoavYDXoofro * *i«nr xujx)oxxoxTXPorrpxxopTTgrrooxxoT^ a *!•* X00XOIOX0XY0Dfm0X00DYTOYDaXX!yr00YT0^^ OOOXXXTOOXXIOTOXTOrOTOTDf)XTO*DXOXOCXOaXXOOXOK) a *I^ XOOXfXIOXOXTPC)trrT3XOfOTTTrrOC^^ 0000XTTfXD0XXXTDXT0TOT0VOfnrrOX0Df)XO0X0XXXODXaX0 O £1^ XOOXOXDXDXTODfrrrOXOOOTTCrrOOXI^rrDTTTXTDXTO^^ 000C^YYfXLIX0YOXTOTDYDTO0TYOTO fi Jl^I X0OXeX000XT00TTT0XOOtlff f TJDXXOTO0TT030 XXXOYOOTOOT0 00tAXXTO0XXX0Tf)XT0TDT0TOOTT0XX0f)XO0XrXXXXaiaiO T Of* Ot* Ott 081 09 i XTWTW10ETTTDTOf)0XTOXOM,TggXl^^ H fLI XTTOTT00MTrWTrOeXOCXOTXYaiJO J *I^ XYTOYDOY3XTYT0YDY9X03XOTXTOXX00t)P^^ 3 M^ XYTDTOO'TDXYTTOYOOOXOOXC0XYOXXOOY« Q JX^ XTTOTTO0atTTT0n»0X0ai0TXT0XX00O00Y00TXTrXOD01^ 0 *I^ X¥ JOffPaOXTTTOTOf)OX00X0TXTOXXO0f)POTTO H *I*Tf XTTYTODYf)XT3YDTDO0X00XMXTf)^^ T M^T ©«ri ort ooi os 09 DOXOtUOaiOOOOMYMTT^^ H *I*T »X0tVI^fUOOCKOXT?)XOYIXXOXIX^ d *X~1 tf *I*f ooi*)O£ODxaci0OXTaj3rxxiof^^ a ji^t 0OXO0XDaiOOOO0XTXT^UJOJJJ^^ O *L+T Of)XOOXOTXOODfOXOaLTriXXTXXXXXOYOXXOOO^ G JT*H[ DOXOaLOMOO0OIXraDXOYXXXOOXXM T M~t 0*1 Ot 1+ OZ- Oty- 09-kóO 480 500 520 540 L*IF ? TCCUAAGAATCACTCTCTATCTGAAAGAGAAGAAATACAGCCCTTO^^ L#IF B TCCAAAGAATCACTOTATATCTGACAGAGAAGAAATACAGCTCrr^ L»XF C TCCAAAGAATCACTtrTTTATCTAATAGAGAGGAAATACAG^^ L«IF D TCCGAAGAATGACrCTCTATCTGACUGAGAAGAAATACATC L*IF £ TTOA A AGA ATCACTCTTTATCTGAOLAAGAAGAAOTATAOCCCr^ CTGTCAflAOCAOAAATCATGAGATCCrrTCTCTTTATGAACGAA L#IF F TCOAA AGA ATCACTCTTTATCTGACAGAGA AGA A ATACAQCC(?ITCrnXrrTQOGAQGTTGTCA^ L^IF G TTCAAAGAATCAC0(nt7rATCTGACAGAGAAGAAATACAGCCCTTQTGCATGOGAGGTT^ 560 580 600 620 640 1*IF A (OTGCAAGAAAGTITAAGAAQTAAGGAAX&4AAACTGGTrCAACAT^ hmir B CTTGCAAAAAAGATTGAAOA AAOGAATOAGACCTGGTACAACAOGGAAATGATTCTCATAGA^ L*IF C CTTGCAAAAAAGATTAAGGAGGAAGGATTGAAAACTGGTTCAACATOGCAAl^ L#IF D CTTGCAAOAJLA0ATTAAGGAGGAAGK}Aa7IItATCTCHTCCA^ LmlW B CTTGCAOGAAAGATTAAOGAOGAAGGAATCIaAACTCKHTCAACATOGAAATG^ L#XT F TTTTCAAGAAAGATTAAGGAGGAACXiAAl£lAACCaiTTCAAC^^ LmZW G CTTGOAAGAAAGATTAAGGAGGAACKlAAlflAAAACntHm^AACATOG L*IF H CTTGCAA A A AAGATTAACGAGGAAGGAl^^AAACTOGTTCATCAT^AAATGATTCTCATTGACTAATA^ 660 $80 700 720 }40 LmJT A TCAAAQACTCATUlTlVltXrTATQACC^ I I ¦ lililliBWlTTAATCAACATTgTATTCAgCTCTTAAOOCACTA LelF B TTTCAAAGACCCTTCTTTCTGCCAAAACCATGCTAra L*IF C TTn^AAGACTCACTTCTATAACCACGACXK)GTrc^ L#IF D TTTCAAAGACTCTCACCCCTOCTATAACTATOACCATGCTOATAAA L*IF B TGCCATTTCTCATTTTTOCTATATCCATGACATO £ L#IF F TTCAAAC^CTCATTTOtLCrrATAACCACCGC^ AflG A A ACATCAlUriTACCTGTOCAOGCA 00 LmTF G TrCAAATATTAATTTCTGCTATATCCATGAgrTGAOTroAATCAAAATTT^ Jg L*XF H TOAAAflAOTCACTTCTATAACCACCACAAflTTOAATCAAA O 760 780 800 eao $4o 1*XF B CttACTACrrCCCTrACAaATGA£CATGCTaATOOATCTATTC^ L#IF 0 TCCITTACAflATGACHSATTCTGATGTCTCrrOT^ L«XF D TOTTCATATAAC&TCATOrGCACCTTTACAC^^ LmlW B CTAGTTCCriTACOOATGATCATOCTaAJtKlATOgOT^ L*IF F CTAGTOCrrrACAGATgACCATOCTOATAGATCTAATr^^ 1 ITUrUCATBTAATATT L«IF O AAATCTTrACAGATGATCATGCCAATCTATCTATTCTAT^ 1*XF H CTTTACAGATaACCATTCTOATCrrCTCCTTTCATCTATTTATTTAAAT^ 860 880 900 920 ?40 L#IF A ATTACGTCATGTGCACCTTTGCACAGTGGTTAAT^ LmJF B CATATrATATTATGTGAACTTTTACATTGTGUUTT^^ l*IF C TOTWnTAATGTAAOAATATATGTTCTTCA^ L+IT B ATOTATTTTTACnTTGTCKiTTAATATA^ L*IF F ATOTGrTACrrTTTACATTGTGTTATATCAAAATATGTTAATCTAAtATTTAGTCAAT^ I*IF G TTAAATTATTTTAAACTTATGTTItnTCAGGTAATA^ L#IF H OGAGTAOCTTTACATTOTGGTTAATGTAACAAATATGTTCrrTGATATI^ 960 980 1000 LmlF B AATTCTTTATTTATTCTTTAAAATTGAACTCC L»IF F ATTATrmaiTATTCTTTAATA A AGA A ATTCCAAGCCC-poly/i/ Fta.3 /c.djSI SIO $20 S23 10 $0 30 kO LtlF A MALTFALLYALLYLSCKSSCSYGCDLPQTHSLGSRRTLMLLAQMRKXSLFSCL]CDRHDFGFPQ Leip d maltftlmvalvvlsyk;sfsslgcdlpqthslgmrralillaqmrrispfsclkdrhdfefpq 1*XP C MAL»rSLi.MAVLVLSYKSICSLGCDLPQTHSLGWRRALILLGQMORrSPFSCLKDRHDFRIPQ L*IF D MASFFALLMYLYYLSCKSSCSLGCDLPETHSLDHRRTL)ILLAQMSRXSPSSCLMDRBDFGFPQ L«IF E LPLGCDLPQAHSVGNRRAFILLTQMRRISPFSYLKDRHDFDFPH L«IF F HALSFSLLMAVLVLSYKSICSLGCDLPQTHSLGWRRALILLAQMflaX*PFSCLKDRHDFQFPQ LsIFG UDFGFPQ L#XP H MALPFSLMMALVVLSCKSSCSLGCNLSQTHSLNWRRTLMLMAQMRRISPFSCLKDRHDFttFPQ w»zy«tki« MA * L YLSKS S G C L THSL R R L ^ QM XS S£L_£HDL L <* 50 60 ?0 80 90 iOO 1*IF ? SB. F-GtfQFQKABTXPYLHEMXQQXFNLFSTKDSSAAYDETLLDKPYTBL,YQQLNDLBACYXQO LalF B BBFDDKQFQKAQA1SVLHEM1QQTPNLPSTKDSSAALDETL1.DEFYIELDQQ;lVDL£VLCDQB L*IP C BBFDQtfQFQKAQAISVLHEMlQqTFNLFSTEDSSAAYEQSLLEKFSTBLYQQLNDLEACVIQB L«IF D BBFDGNQFQXAPAXSVLH£LIQQIFNLPTTKDSSAAVD£DLLDKFCTELYQQLNDLBACVNQB L«XF B QYFHOWHFQKVQAIFLFHBMMQQTFNLFSTKDSSDTYDBTLLDKSYT£LYQQLNDLBACVM K -i L#XF F £BFDG»QFQKAQAISVLHBMlQQTFNLFSTKDSSATYEQSLLEKFSTELNQQLirDMEACVIQB £ L#IF G ££FDGWQFQKAQAXSYLHBMXUQTFNLFSTKDSSAT¥DBTLLDKFYT£LYQQLtfDLEACMMQB ro L*XF H B£FDGNQFqKAQAXSYLH£MMQQTFNLFSTKNSSAA¥D£TLL£KFYXELFQQNKDLBACYXQB g wpvymt*lm E X T D &£&&£ I V L H E |10 120 130 \k0 150 |60 166 LeXF A VOTTBTPLMKEDSILAVRKYFQRITLYLKBKKYSPCAYEVVRAEIMRSFSLSTNLQBSLRSKE LeXF B YOYX£SPLMY£OSXLAYRKYPQRXTLYLTBKKYSSCAY£YYRA£INRSFSLSXNLQKRLKSK£ L«IF C YGYBBTPLMNBDSXLAYRKYFQRITLYLISRKYSPCAYBYYRA£XMRSLSFSTir LQ K R L R R K D L*IF D BRYOBTPLMlfVDSILAVKKYFRRITLYLTBKKYSPCA¥BYVRABIMRSLSLSTNLQBRLRRKB L*IF B VGYBBTPLRWVDSILAYRKYFQRITLYLTKKKYSPCS¥BAVRABIMRSFSL TVLQBRLRRKB L*IF F VGVBBTPLMNVDSILAVKXYFQRITLYLTEKKYSPCAYBVVRABIMRSFSLSKIPQBRLRRKB L*IF G YGY-BDTPLN]fYDSXLTYRKYFQRXTLYI,T£KKYSPGAYBYYRABXMRSFSLSANLQBRLRRKB LmlF H VQVBBTPLMWBDSXLAVRKYPQRITLYLMEKKYSPCAYBYYRABIMRSF8FSTMLQKRLRRKI w«sy«tfeL« Y PJLM D£XL V K I F £ I T L I L S K Y S £A¥BYYRABXMR8 S 8 Q L K %*poryzasad o 200 400 600 800 1000 i i i i i i i i i i i pvui Bg/n Pvun Bg/n A —I Kill»-..:Lli.:-;M.s-i,M-.-.'/VKI-l-.f..-i'iAiJ.-.'».fc,-a l~» EcoRI EcoRI PvuII PyuD g —I kVNSa-.:*l,v-r.--.-W'i'...-.»'.^l-lll.. c E F G H pvun Bg/n Pvun eco ri Q ^U LV.»^-l-.-J.V-Al.!--.«-..'».-l.vAv.^:J-.-.-:-.v:^.1;lv.lJ U ~ PwiH Eco RlPvuB ¦-ga???'.^.'.};."::-'.;-:;-.:,-.^1.^^-.-.'--,.-.^^! n a pwff Bg/n Bg/n ^-ir^vssjb:-y-:-i!u..V:V.t Pvun *~^hYi i • i • • i •'¦ r • m.v- • ••'••',/l »¦••• .-¦'.••• * ••! Pvul rsKL^;.v'-U!^:!^vv.-.--:V^^^:V'.'W^v-^r Rg.5148 260 Rstl l Sau 3a Sau 3a |AvaD jBg/fl * -!-• -W- Sau3a Sau3a Bgfll | Avafl —* 1 * P^tl /:&bp\ 150 bp S23 1 '2 3 12 13 tt 1S gly cys asp leu arg arg thr leu - GGCTGTiGATCTG-AGGAG^Aa TTG- -CCGACACftGAC- TCC TCCTGfe AAC- I Sau3a, Avall Syntetyczny DNA »wyodrebniony fragment 5'AATTCAT6TGT <*TCTG-AGGAG o34bP 3* GTACACACTAG AC-TCC TCC TG ligoza ONA T4 6"Kbp Avall, Bg/11 wyodrebniony fragment o 150 bp Bg/n wyodrebniony fragment o 670bp, czesciowo trawiony AATTCAreT?TSTaG-AGGAG Ava11. B9/n *" Bg/U _ MI G1ACACACTA&AC-TCCTCCTG -™—- ¦umilli i iiiiiiii llll EcoRI tftP AvaII ISObp ligoza DNA T4 i 2 1 Eco RI/ fttl Eco RI met cysasp Pst I AATTCATG TGTGAT ¦¦¦¦¦¦¦ m ¦¦¦ niiiiiniiiiiii min mi GTACACACTA 865bp 67Dbp Fig.6 Xba Rstl Sau3a EcoRI Sau3a| 1 LlK)bpJ-132bp GGCTGT^GATCTG EcoRI STOP Pst I TOObp -o- Fig. 7a HindDI EcoRI Xba EcoRI Sau 3a Le-IFA Pst I H E Trp—- ATGTGT GATCTG 3—I Fig. 7b8 % XMA«m)f0XD0fVLfUJO000T0TXY^ D xoojlooyoomóo910xi#ocoyoyxyyydyyoyooxyyi^ r XOJXDDYOD0daDOY0XX00C)OY0YXYYVOYVOYOV0VYX0XYXI^ I XWXOim00JO00X0XXD0COY0YXYYYDYY9YO0^^ H XOIXO0YOf0XO0f»XXOOOfJY0YXYYYDYVOYOYYYOXOXYX0XOXO YCUYYOYVY00XX3YXYYY00YtXL0X0ODIOXXYD0X0Yty ¥WJTWYM, Y OOC ooooxoYO¥ot?ooxopopixpo*«rerrxYfM*xLo^^ ? ? T»fxooxocxmjj lv ft o DOOOXOY9TOYY0aLO0rOJiOOYOOYOYXYf)X^ T ODOOXOYTYDYYf^YOOttUO0YOOYT)YXYfXLO^^ I OOOOXOYWOTT»OXg)ODOXXDPYOOYDYXYOXaLO^ H 000M0YfJYDYDY0XOD900XOOO0fmYXYt)XOXOX00OYYf^^ Y 00* ooxj^ojsoxaxYoxoY»frroYaYDOYOxxoxaxYvoxxooYf^ o 90XXOOXDf)XaXY0X0YD0YtnrOYOaY0XX0XaXYV0XX00YOT r OOXXOMOOXOXYDX0YOOYOYOYOOVOXXCaOXVVOXXM I O0XXD0X0fXL0XY0X0YYf)YYY0Y0OY0XX0X^ H OOXXOOX0OXaXYDX0Y*OYYY0Y0fY0XXaxaLVV0^^ Y OOC VaiXJ»YO0YOfrY00000XYYD00IXXY0XY0TOY0VOOYVa^ O YfXXI*mOY9OY0YOOOXLYDYOXXYYOXYOVOVOVOOYYf^^ T YOXXI3YO0YODY0000XX0YOMJX0YOX00Y9Y0 I YaXXXYYOOYtmOOOOXlXYYPlXLOYOXY3YPYOYPPYYgra H -•JJllXYOOYO0T0000XlXYf»XXX0Yf)XY0YT)Y0YO0Y Vfl*LDOXD0X0XXXX0X0X0XVYDVOOYMTOYOYDOOX00X0OXYaiX00 YOOYWYDO Y 00 Z VXOOOJ300YOYOOOYOYOXOOtUaLYaL9XOOPOXOXOXY O YXOOf)XOCOYOYOOOYOVOXOOfXIOXYOXOXOOOOXOXOXOfXK)XYODXYYYOYXOOY01^ T YXPOgXIOOOYOYOOOYOYOXOOOI^YPXOXOODYXOXDXXPIOXY I VXYY0X00OY0Y000YYYOX0X0X0XYYXDX0fK0X0X^^ H YXODOI^CXrYOYOOOYTYDXOOaXOXYfXLOXOOOfXLOX^ Y 001 !? -YO0OXYYYYOPXXXYXYQLOYX0OfrYXSPYOX"00YO00YJJO"YY0XXOO0 YOOOOYDYXOO¥ T TfPYtJOXOXOYYY0OYOY0Y0OXYX00Yf)YYXXX O -YOOOXYOYYOOXXXYOYYaOYXODOYXOYYOX-OXYOOOVXJ^)OYVOJXOYYYOOOOYOVXOOYYYYOYOJ^ f YOOOXXO9rnrOXXC)XYO0YOOYOOCOVOOVVaXYOXOOOOYXX I YOYXOXY0 YYOMOXYOOYOOYXOXSVOOYYOX-XXYOOOVOXOOOVX1J^)OYYXOOOYOOXO 0YVOYOY0XXDXO9YYDOYYYDVDOOYX-DODYYXXX H Y0YX0XY0YYOOX0XYDfrrrOYX0X0Y00YY0X-XXY0001l[0X0OOYXXIiOf)YYX00OYO0X00Y^ Y YXOYOXiMtTXO O YXOYOXXOXYXO p YXXD0XX0XYXO X YXOO3XXDXY&0 H VX0D0XXOXY» Y600 A CAGAGCAGAAATCATGAGATCTTTTTCTTTGTC AACAAACTTGCAAGAAAGTTTAAOGAGTAAGGAATGAAAACrrGGTTCAAGATGGAAATGATTTTG AT H CAG^GCAGAAATCATGAGATCCCTCTCnTTTTCAACAAACrrTGCAAAAAAGATTAAGGAGGAAGG I CAGAGCAGAAATCATGAGATCTCTCrrCTTITTCAACAAACrrTGCAAAAAATATTAAGK^ J CAGAGCAGAAATCATGAGATCCrrTCrrCTTTTrCAACAAACTTGA A A A A AOGATTAAGGAGGAAGOigItfkAAACTGCTTCATCATOGAAATGATTCTCAT C CAOlGCAGAAATCATGAGATCCCTCTCOTTTTCiLA^ 700 A TC*TTC«^TGCCAGCTCAC(rrTTTTATGATCTtK;CATCT H TGACTAATACATGITCTCACACTTTCATGAGTTCTTCCATTT^ I TC^CTAATACATTATCTCACACTTTCATGAGTTCCTCCAT^ J TGACTAATGCATCATCTOACACTTTCATGAGTTCTTCCATTTCAAA C TGACTAATACATTATCrTCACACriTTCATGAGTTCrrc^ 800 A GAGTATTAATCAAC^TTGTATTCAGCTCTTAAGGCAlirrAGTCCCriTACAGAGGA H AGGAGTCPTAAAGAAOCATCATGTATACCritJTGCAGGCACTAGTCCriTTACAGATGACCATG^ I AGTGTAAAGAAGCGTCGTGTATACCntlTGCAGGCACTAGTACTTTAC^^ J AGTCTTAAG/a(XJATCGTGTOTA.CCTGTGCAGGC^ C AGTOTA AAGA AGTOTCOTGTATACCTGTGCAOGCACTAGTCCTfrACUGATGACCAT^ 900 A TTTATTTAACrrATTTATAAAAC^LlCTTATTTTTGTTCATATTATGTCATGT^ U ATTTAACTATTTTTATTATTTAAATTATTTCT I TATTTTTAAGATTTAAATTATTTTTTTATGTAATATCA J TAACTATTTTTATTATTTAAATTATTTTTTATGTAATATC ATATGTACCTTTACATi GTGKSTTAATGTAACAAATATOITCTTCATATTTAOCCAATATA C ATTTITiLAJLlTTTATG«AATATCATOAGTCG 1,000 A TAAATTTATTTTOTGTTCTTCATTOA^ U TATATrAATTTCCTTriTCATTAAATTTTTACTATACAAAATTTCTGTGTTT^ I AATTTCCTTTTTCATTAAATTTTTACTATACAAA* I TTAATTTCCTTTTTCATTAAATTTTTACTATACAAAATTTCrrTGTGTTTGTTTArr 'TTTTAAGATTAAATGCCAAGCCntlACrrGT^TAACCTGACTTAA C TTAlATTTTTACTATACAAAATTTCrraaTGTTTG^ Fm 8 c-d-148 260 S1 SIO A MALTFALLYALLYLSCBBS H MALPPSLMMALYYLSCKSS I MALSFSLLMAYLTLSIKSI J MARSFSLLMYYLYLSYKSX C NALSPSLLNAYLYLSYKSI 820 1 10 CSYGCDLFQTHSLGS RRTL CSLOCRL8QTHSLirVRRTL CSLOCDLPaTHSLGMRRAL CSLGCDLPQTHSLR¥RRAL SLGCDLPQTHSLGVRRAL 20 30 A MLLACMRRISLPSCLl M MLNAQNRRISPFSC I ILLAQMORXSPFSC J XLLAQMGRXSFP8C C ILLGQMQRISPPSC 40 5 O LKDRHDFOFPQ£RF-OVfFQKAST LKORHDFRFPQSRFDairQFQKAQA LKDRFDFGLFQRSPDGVQFQKTQA LKDRHSFRFFRRSFDGHQFqKTQA LKDRHOFRXPqRRFOGVqFQKAQA 60 70 80 90 A XFYLHBMXQQXFRLF8TK08SAAVDRTLLDKFYT1LTQ H XSYLHBMMQQTFJrLPSTKtfSSAAVD£TLLBKPYXBLFQ X I S T L H £ O M T FN L F i X B D $ S 1 A H Q U L U ? S X I L I Q J XSYLHBMXQQTFVLF8TBBS8AAVBQSLLBKFSTBLYQ C XSYLHBMXQQTFVLFSTBD88AAVBQSLLBKPSTBXYQ A I X J c LMDL1A NIDL11 L JT N L B A L M D L B A L M D L B A 100 110 120 YXQGyOYTBTPLlfKBDSXLAYRKYFQ T I Q I T O T I I X F L X I I B S I l H I I ! IQ YXQBYGNBBTPLIftfBD YXQBYGYKBTP R I T L R I T L 8XLAYRRYPQRXTL LMBBD? XLAYRKYPQRXTL YXQBYGYBBTPLMHBD8XLAYRRYPQRXTL Fcg 9 PL PL PL

Claims (9)

1.Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania dojrzalego interferonu leukocytów ludzkich zawierajacego 165-166 aminokwasów lub, w przypadku gdy do N-iconca pierwszego aminokwasu tego inter¬ feronu przylaczona jest metionina, zawierajacego 166-167 aminokwasów, i o czesciowej sekwencji Cys-Ala-Trp-Glu-Val-Val-Arg-Ala-Gla-Ile-Met-Arg-Ser,jak wskazano w sekwen¬ cjach na fig. 4 lub fig. 9 w pozycji od 139 do 151» przez powodowanie wzrostu hodowli drobnoustrojów, transformowanych zdolnym do replikacji drobnoustrojowym nosnikiem eks¬ presji, i ekspresje interferonu, znamienny tymTze konstruuje sie wektor E. coli zawierajacy promotor trp E. coli, operator i liderowe miejsce przylaczenia rybosomów trp, izoluje sie fragment DNA kodujacy dojrzaly interferon leukocytów ludz¬ kich, i dokonuje sie insercji tego fragmentu DNA interferonu leukocytów ludzkich za promotorem trp E. coli, operatorem i liderowym miejscem przylaczenia rybosomów trp, otrzymanym wektorem ekspresji E. coli zdolnym do ekspresji dojrzalego interferonu leu¬ kocytów ludzkich, transformuje sie w znany sposób szczep E. coli 1 powoduje sie wzrost transformowanego drobnoustroju w pozywce zawierajacej dodatek tryptofanu w ilosci wys¬ tarczajacej do represji ukladu promotor trp - operator, obniza sie poziom tryptofanu w pozywoe az do indukcji transformowanego drobnoustroju do wytwarzania interferonu, po czym transformowany drobnoustrój poddaje sie lizie przez dodanie llzozymu i nastep¬ na sonifikacje, i wreszcie odzyskuje sie interferon w znany sposób, zwlaszcza metoda stracania, za pomoca chromatografii typu "size exclusion", wysokocisnieniowej chroma¬ tografii cieczowej z odwrócona faza /RF-8/ lub chromatografii powinowactwa na unieru¬ chomionych przeciwcialach przeciw interferonowi.
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA interferonu leuko¬ cytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobnoustrojowej ekspre¬ sji dojrzalego interferonu A leukocytów ludzkich /LelP A/.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA inter¬ feronu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobnoustro¬ jowej ekspresji dojrzalego interferonu B leukocytów ludzkich /LelP B/. 4. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA inter¬ feronu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobnoustro¬ jowej ekspresji dojrzalego interferonu C leukocytów ludzkich /LelP C/, o sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig.4.148 260 235. * Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ge jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu D leukocytów ludzkich /LelF D/f o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 4»6. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu P leukocytów ludzkich /LelF F/t o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 4.7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny t y m, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu H leukocytów ludzkich /LelF H/, o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej.na fig*
4.8. * Sposób wedlug zastrz* 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania ekspre¬ sji dojrzalego interferonu I leukocytów ludzkich /LelF I/, o^sekwencji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 9. 9. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze jako fragment DNA in¬ terferonu leukocytów ludzkich stosuje sie fragment DNA zdolny do powodowania drobno¬ ustrojowej ekspresji dojrzalego interferonu J leukocytów ludzkich /LelF J/, o sekwen¬ cji aminokwasów w pozycji od 1 do 166 przedstawionej na fig. 9.Peptyd trypsynowy (T -1) Peptyd trypsynowy (T-13) Bialko Ala-Glu- Ile -Met-Arg — His-Glu-Met-Ile-Gln— mRNA 5' GCN GAA AUC AUG A(3N 5' CA GA AUG AUC CA„ GUC UG UG fc O Komplemen- 3* CTT TAG TAC GC (T-1A) 3' GTA CTT TAC TA (T-13A) tarne primery T DNA ___c (T.1B) __G (T.13B) T_(T.1C) c (T-13C) Rg.1 —-C T-(T-ID) — G--C---(T-13D)148 260 Próbka 32P- T- IC 1 ^ 4 5 C 7 89.101112131415l6l7j8l92p2l22232425 26 272829303132333435363738 Próbka *P - T - 13C 12 3 4C 6 TA 91011121314156171819 252627282930313233343536373839 4"*P^ Rg.2f % X0TJTrr9TT0XaLD90X0OXT0OX0Y00^^ H £I«f X0VXTrramU*HOY0X00XYX0X0Y!^^ O #!•! X0VXTTVf)TVfXI0X0O0XX0XT0aX0TOeU0XTr!XVMO0C^ Z *H xotx¥ y *fflTPXoxoooxooxTooxoYoai^vrf^ a *r<^ X0TXTrf!*TYaLaKO0XXCXY00X0Y^ a *XTT XOTXrfrO0*t)XtI3DPX0OXTO3X0TO0TfttTV^ O *I«T XOTXTTTOOTOXOd^OOXOaXTDOXOTD^ fl *I«T X0YJTYYWmXIM0«X0XXYD0X0TOOT^ T *I^ 0%% 0*% 00* 08C 09€ MXXJ3YfwaYaYX3XXTrrr?fnrxoo^ h ^i^t 0TXXJ3TTPX3T0TX0XXT¥TOTtTXCXX0T0T0TC^TO0OXX0VX0OX0XT0X0VO0rTV0V0OV0XXaXOXVT0XXD0TOVO0T0aXTaiTgnrfXT00 O £11 OYYXXOYTfXlOTOMXIXYYYYY3TXOOXOOOT0YOW 4 *I^ {^jjjoTroiwyTXOoxfyvovovxxxxoooTOTmTooaLiOTXTPxoxT * sm 3YXCXOYYTOOTOOIOXXTTrOY0TXOOXOOTf^ a *T*1 0YXXXDYTOXOT0OXXXXTYYTTOTXOOXODeTO 3 #J*q 0YDXX0tYDiXT«*X0XXTT0XTDYXaXX000Y^ O «**T 0TX0X0TTOX0T0TXOXLyffOWfX00X300TOT0XYOOOLX0fXiK)X0XT0X0VO0VVT0 T *X^ oirC orC ooc 09? 09Z XOOXOXOXOXTODOTTOXOt)¥ VfP10aXXt»VP0TT09OXTt)XXXTVDDVO0Y0 000XXXYYMXX0TOXVDYOVDYOCrrmi30OX00X^^ H JT^T X00X0X0X0XT0C)0YTaX0f)0TTOTO0XXOT00TT00OXTfJJLXOV XOOXXXVDOXXXOTOXTD O JI*'! xooxoxox3XToooYYoxoooYwrooxxD^^ DoooxxTooixxoTOXTOTOvovoavYDXoofro * *i«nr xujx)oxxoxTXPorrpxxopTTgrrooxxoT^ a *!•* X00XOIOX0XY0Dfm0X00DYTOYDaXX!yr00YT0^^ OOOXXXTOOXXIOTOXTOrOTOTDf)XTO*DXOXOCXOaXXOOXOK) a *I^ XOOXfXIOXOXTPC)trrT3XOfOTTTrrOC^^ 0000XTTfXD0XXXTDXT0TOT0VOfnrrOX0Df)XO0X0XXXODXaX0 O £1^ XOOXOXDXDXTODfrrrOXOOOTTCrrOOXI^rrDTTTXTDXTO^^ 000C^YYfXLIX0YOXTOTDYDTO0TYOTO fi Jl^I X0OXeX000XT00TTT0XOOtlff f TJDXXOTO0TT030 XXXOYOOTOOT0 00tAXXTO0XXX0Tf)XT0TDT0TOOTT0XX0f)XO0XrXXXXaiaiO T Of* Ot* Ott 081 09 i XTWTW10ETTTDTOf)0XTOXOM,TggXl^^ H fLI XTTOTT00MTrWTrOeXOCXOTXYaiJO J *I^ XYTOYDOY3XTYT0YDY9X03XOTXTOXX00t)P^^ 3 M^ XYTDTOO'TDXYTTOYOOOXOOXC0XYOXXOOY« Q JX^ XTTOTTO0atTTT0n»0X0ai0TXT0XX00O00Y00TXTrXOD01^ 0 *I^ X¥ JOffPaOXTTTOTOf)OX00X0TXTOXXO0f)POTTO H *I*Tf XTTYTODYf)XT3YDTDO0X00XMXTf)^^ T M^T ©«ri ort ooi os 09 DOXOtUOaiOOOOMYMTT^^ H *I*T »X0tVI^fUOOCKOXT?)XOYIXXOXIX^ d *X~1 tf *I*f ooi*)O£ODxaci0OXTaj3rxxiof^^ a ji^t 0OXO0XDaiOOOO0XTXT^UJOJJJ^^ O *L+T Of)XOOXOTXOODfOXOaLTriXXTXXXXXOYOXXOOO^ G JT*H[ DOXOaLOMOO0OIXraDXOYXXXOOXXM T M~t 0*1 Ot 1+ OZ- Oty- 09-kóO 480 500 520 540 L*IF ? TCCUAAGAATCACTCTCTATCTGAAAGAGAAGAAATACAGCCCTTO^^ L#IF B TCCAAAGAATCACTOTATATCTGACAGAGAAGAAATACAGCTCrr^ L»XF C TCCAAAGAATCACTtrTTTATCTAATAGAGAGGAAATACAG^^ L«IF D TCCGAAGAATGACrCTCTATCTGACUGAGAAGAAATACATC L*IF £ TTOA A AGA ATCACTCTTTATCTGAOLAAGAAGAAOTATAOCCCr^ CTGTCAflAOCAOAAATCATGAGATCCrrTCTCTTTATGAACGAA L#IF F TCOAA AGA ATCACTCTTTATCTGACAGAGA AGA A ATACAQCC(?ITCrnXrrTQOGAQGTTGTCA^ L^IF G TTCAAAGAATCAC0(nt7rATCTGACAGAGAAGAAATACAGCCCTTQTGCATGOGAGGTT^ 560 580 600 620 640 1*IF A (OTGCAAGAAAGTITAAGAAQTAAGGAAX&4AAACTGGTrCAACAT^ hmir B CTTGCAAAAAAGATTGAAOA AAOGAATOAGACCTGGTACAACAOGGAAATGATTCTCATAGA^ L*IF C CTTGCAAAAAAGATTAAGGAGGAAGGATTGAAAACTGGTTCAACATOGCAAl^ L#IF D CTTGCAAOAJLA0ATTAAGGAGGAAGK}Aa7IItATCTCHTCCA^ LmlW B CTTGCAOGAAAGATTAAOGAOGAAGGAATCIaAACTCKHTCAACATOGAAATG^ L#XT F TTTTCAAGAAAGATTAAGGAGGAACXiAAl£lAACCaiTTCAAC^^ LmZW G CTTGOAAGAAAGATTAAGGAGGAACKlAAlflAAAACntHm^AACATOG L*IF H CTTGCAA A A AAGATTAACGAGGAAGGAl^^AAACTOGTTCATCAT^AAATGATTCTCATTGACTAATA^ 660 $80 700 720 }40 LmJT A TCAAAQACTCATUlTlVltXrTATQACC^ I I ¦ lililliBWlTTAATCAACATTgTATTCAgCTCTTAAOOCACTA LelF B TTTCAAAGACCCTTCTTTCTGCCAAAACCATGCTAra L*IF C TTn^AAGACTCACTTCTATAACCACGACXK)GTrc^ L#IF D TTTCAAAGACTCTCACCCCTOCTATAACTATOACCATGCTOATAAA L*IF B TGCCATTTCTCATTTTTOCTATATCCATGACATO £ L#IF F TTCAAAC^CTCATTTOtLCrrATAACCACCGC^ AflG A A ACATCAlUriTACCTGTOCAOGCA 00 LmTF G TrCAAATATTAATTTCTGCTATATCCATGAgrTGAOTroAATCAAAATTT^ Jg L*XF H TOAAAflAOTCACTTCTATAACCACCACAAflTTOAATCAAA O 760 780 800 eao $4o 1*XF B CttACTACrrCCCTrACAaATGA£CATGCTaATOOATCTATTC^ L#IF 0 TCCITTACAflATGACHSATTCTGATGTCTCrrOT^ L«XF D TOTTCATATAAC&TCATOrGCACCTTTACAC^^ LmlW B CTAGTTCCriTACOOATGATCATOCTaAJtKlATOgOT^ L*IF F CTAGTOCrrrACAGATgACCATOCTOATAGATCTAATr^^ 1 ITUrUCATBTAATATT L«IF O AAATCTTrACAGATGATCATGCCAATCTATCTATTCTAT^ 1*XF H CTTTACAGATaACCATTCTOATCrrCTCCTTTCATCTATTTATTTAAAT^ 860 880 900 920 ?40 L#IF A ATTACGTCATGTGCACCTTTGCACAGTGGTTAAT^ LmJF B CATATrATATTATGTGAACTTTTACATTGTGUUTT^^ l*IF C TOTWnTAATGTAAOAATATATGTTCTTCA^ L+IT B ATOTATTTTTACnTTGTCKiTTAATATA^ L*IF F ATOTGrTACrrTTTACATTGTGTTATATCAAAATATGTTAATCTAAtATTTAGTCAAT^ I*IF G TTAAATTATTTTAAACTTATGTTItnTCAGGTAATA^ L#IF H OGAGTAOCTTTACATTOTGGTTAATGTAACAAATATGTTCrrTGATATI^ 960 980 1000 LmlF B AATTCTTTATTTATTCTTTAAAATTGAACTCC L»IF F ATTATrmaiTATTCTTTAATA A AGA A ATTCCAAGCCC-poly/i/ Fta.3 /c.djSI SIO $20 S23 10 $0 30 kO LtlF A MALTFALLYALLYLSCKSSCSYGCDLPQTHSLGSRRTLMLLAQMRKXSLFSCL]CDRHDFGFPQ Leip d maltftlmvalvvlsyk;sfsslgcdlpqthslgmrralillaqmrrispfsclkdrhdfefpq 1*XP C MAL»rSLi.MAVLVLSYKSICSLGCDLPQTHSLGWRRALILLGQMORrSPFSCLKDRHDFRIPQ L*IF D MASFFALLMYLYYLSCKSSCSLGCDLPETHSLDHRRTL)ILLAQMSRXSPSSCLMDRBDFGFPQ L«IF E LPLGCDLPQAHSVGNRRAFILLTQMRRISPFSYLKDRHDFDFPH L«IF F HALSFSLLMAVLVLSYKSICSLGCDLPQTHSLGWRRALILLAQMflaX*PFSCLKDRHDFQFPQ LsIFG UDFGFPQ L#XP H MALPFSLMMALVVLSCKSSCSLGCNLSQTHSLNWRRTLMLMAQMRRISPFSCLKDRHDFttFPQ w»zy«tki« MA * L YLSKS S G C L THSL R R L ^ QM XS S£L_£HDL L <* 50 60 ?0 80 90 iOO 1*IF ? SB. F-GtfQFQKABTXPYLHEMXQQXFNLFSTKDSSAAYDETLLDKPYTBL,YQQLNDLBACYXQO LalF B BBFDDKQFQKAQA1SVLHEM1QQTPNLPSTKDSSAALDETL1.DEFYIELDQQ;lVDL£VLCDQB L*IP C BBFDQtfQFQKAQAISVLHEMlQqTFNLFSTEDSSAAYEQSLLEKFSTBLYQQLNDLEACVIQB L«IF D BBFDGNQFQXAPAXSVLH£LIQQIFNLPTTKDSSAAVD£DLLDKFCTELYQQLNDLBACVNQB L«XF B QYFHOWHFQKVQAIFLFHBMMQQTFNLFSTKDSSDTYDBTLLDKSYT£LYQQLNDLBACVM K -i L#XF F £BFDG»QFQKAQAISVLHBMlQQTFNLFSTKDSSATYEQSLLEKFSTELNQQLirDMEACVIQB £ L#IF G ££FDGWQFQKAQAXSYLHBMXUQTFNLFSTKDSSAT¥DBTLLDKFYT£LYQQLtfDLEACMMQB ro L*XF H B£FDGNQFqKAQAXSYLH£MMQQTFNLFSTKNSSAA¥D£TLL£KFYXELFQQNKDLBACYXQB g wpvymt*lm E X T D &£&&£ I V L H E |10 120 130 \k0 150 |60 166 LeXF A VOTTBTPLMKEDSILAVRKYFQRITLYLKBKKYSPCAYEVVRAEIMRSFSLSTNLQBSLRSKE LeXF B YOYX£SPLMY£OSXLAYRKYPQRXTLYLTBKKYSSCAY£YYRA£INRSFSLSXNLQKRLKSK£ L«IF C YGYBBTPLMNBDSXLAYRKYFQRITLYLISRKYSPCAYBYYRA£XMRSLSFSTir LQ K R L R R K D L*IF D BRYOBTPLMlfVDSILAVKKYFRRITLYLTBKKYSPCA¥BYVRABIMRSLSLSTNLQBRLRRKB L*IF B VGYBBTPLRWVDSILAYRKYFQRITLYLTKKKYSPCS¥BAVRABIMRSFSL TVLQBRLRRKB L*IF F VGVBBTPLMNVDSILAVKXYFQRITLYLTEKKYSPCAYBVVRABIMRSFSLSKIPQBRLRRKB L*IF G YGY-BDTPLN]fYDSXLTYRKYFQRXTLYI,T£KKYSPGAYBYYRABXMRSFSLSANLQBRLRRKB LmlF H VQVBBTPLMWBDSXLAVRKYPQRITLYLMEKKYSPCAYBYYRABIMRSF8FSTMLQKRLRRKI w«sy«tfeL« Y PJLM D£XL V K I F £ I T L I L
5.S K Y S £A¥BYYRABXMR8 S 8 Q L K %*poryzasad o 200 400 600 800 1000 i i i i i i i i i i i pvui Bg/n Pvun Bg/n A —I Kill»-..:Lli.:-;M.s-i,M-.-.'/VKI-l-.f..-i'iAiJ.-.'».fc,-a l~» EcoRI EcoRI PvuII PyuD g —I kVNSa-.:*l,v-r.--.-W'i'...-.»'.^l-lll.. c E F G H pvun Bg/n Pvun eco ri Q ^U LV.»^-l-.-J.V-Al.!--.«-..'».-l.vAv.^:J-.-.-:-.v:^.1;lv.lJ U ~ PwiH Eco RlPvuB ¦-ga???'.^.'.};."::-'.;-:;-.:,-.^1.^^-.-.'--,.-.^^! n a pwff Bg/n Bg/n ^-ir^vssjb:-y-:-i!u..V:V.t Pvun *~^hYi i • i • • i •'¦ r • m.v- • ••'••',/l »¦••• .-¦'.••• * ••! Pvul rsKL^;.v'-U!^:!^vv.-.--:V^^^:V'.'W^v-^r Rg.5148 260 Rstl l Sau 3a Sau 3a |AvaD jBg/fl * -!-• -W- Sau3a Sau3a Bgfll | Avafl —* 1 * P^tl /:&bp\ 150 bp S23 1 '2 3 12 13 tt 1S gly cys asp leu arg arg thr leu - GGCTGTiGATCTG-AGGAG^Aa TTG- -CCGACACftGAC- TCC TCCTGfe AAC- I Sau3a, Avall Syntetyczny DNA »wyodrebniony fragment 5'AATTCAT6TGT <*TCTG-AGGAG o34bP 3* GTACACACTAG AC-TCC TCC TG ligoza ONA T4 6"Kbp Avall, Bg/11 wyodrebniony fragment o 150 bp Bg/n wyodrebniony fragment o 670bp, czesciowo trawiony AATTCAreT?TSTaG-AGGAG Ava11. B9/n *" Bg/U _ MI G1ACACACTA&AC-TCCTCCTG -™—- ¦umilli i iiiiiiii llll EcoRI tftP AvaII ISObp ligoza DNA T4 i 2 1 Eco RI/ fttl Eco RI met cysasp Pst I AATTCATG TGTGAT ¦¦¦¦¦¦¦ m ¦¦¦ niiiiiniiiiiii min mi GTACACACTA 865bp 67Dbp Fig.
6.Xba Rstl Sau3a EcoRI Sau3a| 1 LlK)bpJ-132bp GGCTGT^GATCTG EcoRI STOP Pst I TOObp -o- Fig. 7a HindDI EcoRI Xba EcoRI Sau 3a Le-IFA Pst I H E Trp—- ATGTGT GATCTG 3—I Fig. 7b8 % XMA«m)f0XD0fVLfUJO000T0TXY^ D xoojlooyoomóo910xi#ocoyoyxyyydyyoyooxyyi^ r XOJXDDYOD0daDOY0XX00C)OY0YXYYVOYVOYOV0VYX0XYXI^ I XWXOim00JO00X0XXD0COY0YXYYYDYY9YO0^^ H XOIXO0YOf0XO0f»XXOOOfJY0YXYYYDYVOYOYYYOXOXYX0XOXO YCUYYOYVY00XX3YXYYY00YtXL0X0ODIOXXYD0X0Yty ¥WJTWYM, Y OOC ooooxoYO¥ot?ooxopopixpo*«rerrxYfM*xLo^^ ? ? T»fxooxocxmjj lv ft o DOOOXOY9TOYY0aLO0rOJiOOYOOYOYXYf)X^ T ODOOXOYTYDYYf^YOOttUO0YOOYT)YXYfXLO^^ I OOOOXOYWOTT»OXg)ODOXXDPYOOYDYXYOXaLO^ H 000M0YfJYDYDY0XOD900XOOO0fmYXYt)XOXOX00OYYf^^ Y 00* ooxj^ojsoxaxYoxoY»frroYaYDOYOxxoxaxYvoxxooYf^ o 90XXOOXDf)XaXY0X0YD0YtnrOYOaY0XX0XaXYV0XX00YOT r OOXXOMOOXOXYDX0YOOYOYOYOOVOXXCaOXVVOXXM I O0XXD0X0fXL0XY0X0YYf)YYY0Y0OY0XX0X^ H OOXXOOX0OXaXYDX0Y*OYYY0Y0fY0XXaxaLVV0^^ Y OOC VaiXJ»YO0YOfrY00000XYYD00IXXY0XY0TOY0VOOYVa^ O YfXXI*mOY9OY0YOOOXLYDYOXXYYOXYOVOVOVOOYYf^^ T YOXXI3YO0YODY0000XX0YOMJX0YOX00Y9Y0 I YaXXXYYOOYtmOOOOXlXYYPlXLOYOXY3YPYOYPPYYgra H -•JJllXYOOYO0T0000XlXYf»XXX0Yf)XY0YT)Y0YO0Y Vfl*LDOXD0X0XXXX0X0X0XVYDVOOYMTOYOYDOOX00X0OXYaiX00 YOOYWYDO Y 00 Z VXOOOJ300YOYOOOYOYOXOOtUaLYaL9XOOPOXOXOXY O YXOOf)XOCOYOYOOOYOVOXOOfXIOXYOXOXOOOOXOXOXOfXK)XYODXYYYOYXOOY01^ T YXPOgXIOOOYOYOOOYOYOXOOOI^YPXOXOODYXOXDXXPIOXY I VXYY0X00OY0Y000YYYOX0X0X0XYYXDX0fK0X0X^^ H YXODOI^CXrYOYOOOYTYDXOOaXOXYfXLOXOOOfXLOX^ Y 001 !? -YO0OXYYYYOPXXXYXYQLOYX0OfrYXSPYOX"00YO00YJJO"YY0XXOO0 YOOOOYDYXOO¥ T TfPYtJOXOXOYYY0OYOY0Y0OXYX00Yf)YYXXX O -YOOOXYOYYOOXXXYOYYaOYXODOYXOYYOX-OXYOOOVXJ^)OYVOJXOYYYOOOOYOVXOOYYYYOYOJ^ f YOOOXXO9rnrOXXC)XYO0YOOYOOCOVOOVVaXYOXOOOOYXX I YOYXOXY0 YYOMOXYOOYOOYXOXSVOOYYOX-XXYOOOVOXOOOVX1J^)OYYXOOOYOOXO 0YVOYOY0XXDXO9YYDOYYYDVDOOYX-DODYYXXX H Y0YX0XY0YYOOX0XYDfrrrOYX0X0Y00YY0X-XXY0001l[0X0OOYXXIiOf)YYX00OYO0X00Y^ Y YXOYOXiMtTXO O YXOYOXXOXYXO p YXXD0XX0XYXO X YXOO3XXDXY&0 H VX0D0XXOXY» Y600 A CAGAGCAGAAATCATGAGATCTTTTTCTTTGTC AACAAACTTGCAAGAAAGTTTAAOGAGTAAGGAATGAAAACrrGGTTCAAGATGGAAATGATTTTG AT H CAG^GCAGAAATCATGAGATCCCTCTCnTTTTCAACAAACrrTGCAAAAAAGATTAAGGAGGAAGG I CAGAGCAGAAATCATGAGATCTCTCrrCTTITTCAACAAACrrTGCAAAAAATATTAAGK^ J CAGAGCAGAAATCATGAGATCCrrTCrrCTTTTrCAACAAACTTGA A A A A AOGATTAAGGAGGAAGOigItfkAAACTGCTTCATCATOGAAATGATTCTCAT C CAOlGCAGAAATCATGAGATCCCTCTCOTTTTCiLA^ 700 A TC*TTC«^TGCCAGCTCAC(rrTTTTATGATCTtK;CATCT H TGACTAATACATGITCTCACACTTTCATGAGTTCTTCCATTT^ I TC^CTAATACATTATCTCACACTTTCATGAGTTCCTCCAT^ J TGACTAATGCATCATCTOACACTTTCATGAGTTCTTCCATTTCAAA C TGACTAATACATTATCrTCACACriTTCATGAGTTCrrc^ 800 A GAGTATTAATCAAC^TTGTATTCAGCTCTTAAGGCAlirrAGTCCCriTACAGAGGA H AGGAGTCPTAAAGAAOCATCATGTATACCritJTGCAGGCACTAGTCCriTTACAGATGACCATG^ I AGTGTAAAGAAGCGTCGTGTATACCntlTGCAGGCACTAGTACTTTAC^^ J AGTCTTAAG/a(XJATCGTGTOTA.
7.CCTGTGCAGGC^ C AGTOTA AAGA AGTOTCOTGTATACCTGTGCAOGCACTAGTCCTfrACUGATGACCAT^ 900 A TTTATTTAACrrATTTATAAAAC^LlCTTATTTTTGTTCATATTATGTCATGT^ U ATTTAACTATTTTTATTATTTAAATTATTTCT I TATTTTTAAGATTTAAATTATTTTTTTATGTAATATCA J TAACTATTTTTATTATTTAAATTATTTTTTATGTAATATC ATATGTACCTTTACATi GTGKSTTAATGTAACAAATATOITCTTCATATTTAOCCAATATA C ATTTITiLAJLlTTTATG«AATATCATOAGTCG 1,000 A TAAATTTATTTTOTGTTCTTCATTOA^ U TATATrAATTTCCTTriTCATTAAATTTTTACTATACAAAATTTCTGTGTTT^ I AATTTCCTTTTTCATTAAATTTTTACTATACAAA* I TTAATTTCCTTTTTCATTAAATTTTTACTATACAAAATTTCrrTGTGTTTGTTTArr 'TTTTAAGATTAAATGCCAAGCCntlACrrGT^TAACCTGACTTAA C TTAlATTTTTACTATACAAAATTTCrraaTGTTTG^ Fm 8 c-d-148 260 S1 SIO A MALTFALLYALLYLSCBBS H MALPPSLMMALYYLSCKSS I MALSFSLLMAYLTLSIKSI J MARSFSLLMYYLYLSYKSX C NALSPSLLNAYLYLSYKSI 820 1 10 CSYGCDLFQTHSLGS RRTL CSLOCRL8QTHSLirVRRTL CSLOCDLPaTHSLGMRRAL CSLGCDLPQTHSLR¥RRAL SLGCDLPQTHSLGVRRAL 20 30 A MLLACMRRISLPSCLl M MLNAQNRRISPFSC I ILLAQMORXSPFSC J XLLAQMGRXSFP8C C ILLGQMQRISPPSC 40 5 O LKDRHDFOFPQ£RF-OVfFQKAST LKORHDFRFPQSRFDairQFQKAQA LKDRFDFGLFQRSPDGVQFQKTQA LKDRHSFRFFRRSFDGHQFqKTQA LKDRHOFRXPqRRFOGVqFQKAQA 60 70 80 90 A XFYLHBMXQQXFRLF8TK08SAAVDRTLLDKFYT1LTQ H XSYLHBMMQQTFJrLPSTKtfSSAAVD£TLLBKPYXBLFQ X I S T L H £ O M T FN L F i X B D $ S 1 A H Q U L U ? S X I L I Q J XSYLHBMXQQTFVLF8TBBS8AAVBQSLLBKFSTBLYQ C XSYLHBMXQQTFVLFSTBD88AAVBQSLLBKPSTBXYQ A I X J c LMDL1A NIDL11 L JT N L B A L M D L B A L M D L B A 100 110 120 YXQGyOYTBTPLlfKBDSXLAYRKYFQ T I Q I T O T I I X F L X I I B
8.S I l H I I ! IQ YXQBYGNBBTPLIftfBD YXQBYGYKBTP R I T L R I T L 8XLAYRRYPQRXTL LMBBD? XLAYRKYPQRXTL YXQBYGYBBTPLMHBD8XLAYRRYPQRXTL Fcg
9.PL PL PL
PL1981231940A 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining mature interferon of human leucocytes PL148260B1 (en)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US16498680A 1980-07-01 1980-07-01
US18490980A 1980-09-08 1980-09-08
US20557880A 1980-11-10 1980-11-10
US06/256,204 US6610830B1 (en) 1980-07-01 1981-04-21 Microbial production of mature human leukocyte interferons

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL231940A1 PL231940A1 (en) 1983-07-18
PL148260B1 true PL148260B1 (en) 1989-09-30

Family

ID=27496622

Family Applications (3)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981255773A PL148261B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes
PL1981231940A PL148260B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining mature interferon of human leucocytes
PL1981255774A PL148276B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining an expression carrier capable to express a mature interferone of human leucocytes in a transformed strain of e. coli

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981255773A PL148261B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining microorganisms capable to produce mature interferon of human leucocytes

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1981255774A PL148276B1 (en) 1980-07-01 1981-06-30 Method of obtaining an expression carrier capable to express a mature interferone of human leucocytes in a transformed strain of e. coli

Country Status (36)

Country Link
EP (2) EP0043980B1 (pl)
AR (1) AR242833A1 (pl)
AT (3) ATE79901T1 (pl)
AU (1) AU552004B2 (pl)
BG (1) BG42189A3 (pl)
BR (1) BR8104189A (pl)
CH (2) CH657141A5 (pl)
CS (1) CS273152B2 (pl)
DD (3) DD202307A5 (pl)
DE (3) DE3177288T3 (pl)
DK (1) DK173543B1 (pl)
DZ (1) DZ312A1 (pl)
ES (1) ES8207514A1 (pl)
FI (1) FI82712C (pl)
FR (1) FR2486098B1 (pl)
GB (1) GB2079291B (pl)
GE (1) GEP19960519B (pl)
GR (1) GR75714B (pl)
HK (1) HK49285A (pl)
HU (1) HU196457B (pl)
IE (1) IE49255B1 (pl)
IT (1) IT1137272B (pl)
KE (1) KE3534A (pl)
LU (1) LU83461A1 (pl)
MC (1) MC1396A1 (pl)
MY (1) MY8700711A (pl)
NL (1) NL8103151A (pl)
NO (1) NO159392C (pl)
NZ (1) NZ197572A (pl)
PH (1) PH18036A (pl)
PL (3) PL148261B1 (pl)
PT (1) PT73289B (pl)
RO (1) RO87590A (pl)
SE (2) SE8104093L (pl)
SU (1) SU1414319A3 (pl)
YU (1) YU47700B (pl)

Families Citing this family (50)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ZA811368B (en) * 1980-03-24 1982-04-28 Genentech Inc Bacterial polypedtide expression employing tryptophan promoter-operator
DE3177213D1 (de) 1980-04-03 1990-10-18 Biogen Inc Dns-sequenzen, rekombinante dns-molekuele und verfahren zur herstellung von dem menschlichen fibroblast-interferon.
ATE25985T1 (de) * 1980-06-12 1987-04-15 Japan Found Cancer Plasmid.
DK489481A (da) * 1980-11-10 1982-05-11 Searle & Co Plasmidvektor og frmgangsmaade til fremstilling deraf
NZ199722A (en) * 1981-02-25 1985-12-13 Genentech Inc Dna transfer vector for expression of exogenous polypeptide in yeast;transformed yeast strain
WO1983000693A1 (en) * 1981-08-14 1983-03-03 Berg, Kurt, Frimann SUBJECTS RELATING TO HUMAN INTEFERON-'alpha' SUBTYPE PROTEINS AND CORRESPONDING ANTIBODIES
JPS58110548A (ja) * 1981-12-24 1983-07-01 Asahi Chem Ind Co Ltd 新規な生理活性ペプチド
US4973479A (en) * 1982-01-15 1990-11-27 Cetus Corporation Interferon-α61
US4975276A (en) * 1982-01-15 1990-12-04 Cetus Corporation Interferon-alpha 54
US5098703A (en) * 1982-01-15 1992-03-24 Cetus Corporation Interferon-alpha 76
US4775622A (en) * 1982-03-08 1988-10-04 Genentech, Inc. Expression, processing and secretion of heterologous protein by yeast
US6432677B1 (en) 1982-03-08 2002-08-13 Genentech, Inc. Non-human animal interferons
US5827694A (en) * 1982-03-08 1998-10-27 Genentech, Inc. DNA encoding non-human animal interferons, vectors and hosts therefor, and recombinant production of IFN polypeptides
IE54592B1 (en) * 1982-03-08 1989-12-06 Genentech Inc Anumal interferons, processes involved in their production, compositions containing them, dna sequences coding therefor and espression vehicles containing such sequences and cells transformed thereby
DE3382317D1 (de) * 1982-03-15 1991-07-25 Schering Corp Hybride dns, damit hergestellte bindungszusammensetzung und verfahren dafuer.
CA1210714A (en) * 1982-03-23 1986-09-02 Alan Sloma .alpha.-INTERFERON GX-1
US4695543A (en) * 1982-03-23 1987-09-22 Bristol-Myers Company Alpha Interferon GX-1
US4748233A (en) * 1982-03-23 1988-05-31 Bristol-Myers Company Alpha-interferon Gx-1
US6936694B1 (en) * 1982-05-06 2005-08-30 Intermune, Inc. Manufacture and expression of large structural genes
US5831023A (en) * 1982-11-01 1998-11-03 Genentech, Inc. Recombinant animal interferon polypeptides
JPS60500574A (ja) * 1983-02-24 1985-04-25 インステイチユト オルガニチエスコゴ シンテザ アカデミイ ナウク ラトビイスコイ エスエスア−ル ヒト白血球インタ−フェロンn及び細菌細胞におけるその製造方法
WO1985002862A1 (en) * 1983-12-23 1985-07-04 Monash University PRODUCTION OF HUMAN INTERFERON-alpha
SU1364343A1 (ru) * 1984-07-13 1988-01-07 Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Способ получени человеческого лейкоцитарного интерферона альфа-2
IL76360A0 (en) 1984-09-26 1986-01-31 Takeda Chemical Industries Ltd Mutual separation of proteins
WO1986002068A1 (en) * 1984-09-26 1986-04-10 Takeda Chemical Industries, Ltd. Mutual separation of proteins
US5196323A (en) * 1985-04-27 1993-03-23 Boehringer Ingelheim International Gmbh Process for preparing and purifying alpha-interferon
DE3515336C2 (de) * 1985-04-27 1994-01-20 Boehringer Ingelheim Int Verfahren zur Herstellung und Reinigung von â-Interferon
JP2514950B2 (ja) * 1986-03-10 1996-07-10 エフ・ホフマン―ラ ロシユ アーゲー 化学修飾蛋白質,その製造法および中間体
JPS6463395A (en) * 1987-05-04 1989-03-09 Oncogen Oncostatin m and novel composition having antitumor activity
CA1309044C (en) * 1987-11-09 1992-10-20 Toshiya Takano Method of producing foreign gene products
GB8813032D0 (en) * 1988-06-02 1988-07-06 Boehringer Ingelheim Int Antiviral pharmaceutical composition
WO1991003251A1 (en) * 1989-09-08 1991-03-21 California Institute Of Biological Research Cr2 ligand compositions and methods for modulating immune cell functions
DE3932311A1 (de) * 1989-09-28 1991-04-11 Boehringer Ingelheim Int Verfahren zur reinigung von beta-interferon
AU1854695A (en) * 1994-03-07 1995-09-25 Imperial College Of Science, Technology And Medicine The use of interferon subtypes in the preparation of medicaments to treat viral infections
EP1104809A1 (en) * 1994-04-09 2001-06-06 F. Hoffmann-La Roche Ag Process for producing alpha-interferon
GB9609932D0 (en) * 1996-05-13 1996-07-17 Hoffmann La Roche Use of IL-12 and IFN alpha for the treatment of infectious diseases
US20030190307A1 (en) 1996-12-24 2003-10-09 Biogen, Inc. Stable liquid interferon formulations
ZA9811070B (en) 1997-12-08 2000-07-03 Genentech Inc Type I interferons.
EP1037995A1 (en) 1997-12-08 2000-09-27 Genentech, Inc. Human interferon-epsilon: a type 1 interferon
ATE498409T1 (de) 1998-08-06 2011-03-15 Mountain View Pharmaceuticals Peg-uricase konjugate und verwendung davon
US6783965B1 (en) 2000-02-10 2004-08-31 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Aggregate-free urate oxidase for preparation of non-immunogenic polymer conjugates
US6268178B1 (en) 1999-05-25 2001-07-31 Phage Biotechnology Corp. Phage-dependent super-production of biologically active protein and peptides
WO2002036627A2 (en) * 2000-11-03 2002-05-10 Pbl Biomedical Laboratories Interferons, uses and compositions related thereto
FR2822845B1 (fr) 2001-03-30 2003-12-12 Genodyssee Nouveaux polynucleotides comportant des polymorphismes de type snp fonctionnels dans la sequence nucleotidique du gene ifn-alpha-21 ainsi que de nouveaux polypeptides codes par ces polynucleotides et leurs utilisations therapeutiques
FR2823220B1 (fr) 2001-04-04 2003-12-12 Genodyssee Nouveaux polynucleotides et polypeptides de l'erythropoietine (epo)
FR2825716B1 (fr) 2001-06-11 2004-09-24 Genodyssee Nouveaux polynucleotides et polypeptides de l'ifn alpha 7
WO2006110819A2 (en) 2005-04-11 2006-10-19 Savient Pharmaceuticals, Inc. Variant forms of urate oxidase and use thereof
US20110034672A1 (en) * 2008-01-18 2011-02-10 Roberto Falkenstein Purification of not-glycosylated polypeptides
BRPI1010069A2 (pt) 2009-06-25 2016-03-15 Savient Pharmaceuticals Inc "método para prevenir reações à infusão durante terapia por uricase peguilada em pacientes; e método para diagnosticar se um paciente tratado com uricase peguilada desenvolverá reações à infusão ou desenvolverá liberação de uricase peguilada mediada por anticorpo sem a medição de títulos de anticorpos anti-peg e anti-uricase peguilada"
WO2018087345A1 (en) 2016-11-14 2018-05-17 F. Hoffmann-La Roche Ag COMBINATION THERAPY OF AN HBsAg INHIBITOR, A NUCLEOS(T)IDE ANALOGUE AND AN INTERFERON

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IN150740B (pl) * 1978-11-24 1982-12-04 Hoffmann La Roche
FI77877C (fi) * 1979-04-20 1989-05-10 Technobiotic Ltd Foerfarande foer framstaellning och rening av human le-formig interferonprotein.
EP0032134B2 (en) * 1980-01-08 1993-10-13 Biogen, Inc. Dna sequences, recombinant dna molecules and processes for producing human interferon-alpha like polypeptides
DE3005897A1 (de) * 1980-02-16 1981-09-03 Hoechst Ag, 6000 Frankfurt Genprodukt eines hoeheren organismus aus einem dieses gen enhtaltenden mikroorganismus
ATE25985T1 (de) * 1980-06-12 1987-04-15 Japan Found Cancer Plasmid.
ES8302778A1 (es) * 1980-11-10 1983-02-01 Genentech Inc Un procedimiento para producir un polipeptido antiviral.
FI64813C (fi) * 1980-12-31 1984-01-10 Ilkka Antero Palva Foerfarande foer producering av ett utvalt aeggviteaemne och vid foerfarandet anvaenda rekombinantplasmidvektorer
EP0062971B1 (en) * 1981-03-27 1990-03-07 Imperial Chemical Industries Plc Genetically modified microorganisms

Also Published As

Publication number Publication date
ATA290981A (de) 1985-09-15
PL148276B1 (en) 1989-09-30
KE3534A (en) 1985-06-07
GEP19960519B (en) 1996-07-02
DE3177288T2 (de) 1992-12-10
FI812067L (fi) 1982-01-02
ATE29727T1 (de) 1987-10-15
GB2079291A (en) 1982-01-20
IE49255B1 (en) 1985-09-04
IT1137272B (it) 1986-09-03
GB2079291B (en) 1984-06-13
AU7246281A (en) 1982-01-07
YU47700B (sh) 1996-01-08
HU196457B (en) 1988-11-28
IE811463L (en) 1982-01-01
FR2486098A1 (fr) 1982-01-08
CH651308A5 (de) 1985-09-13
DD210305A5 (de) 1984-06-06
CS503781A2 (en) 1990-07-12
RO87590A (ro) 1986-07-30
NO812247L (no) 1982-01-04
CH657141A5 (de) 1986-08-15
FI82712C (fi) 1991-04-10
DK291081A (da) 1982-01-02
IT8122682A0 (it) 1981-07-01
NO159392C (no) 1988-12-21
HK49285A (en) 1985-07-05
NZ197572A (en) 1985-07-31
MY8700711A (en) 1987-12-31
PH18036A (en) 1985-03-06
DD202307A5 (de) 1983-09-07
NL8103151A (nl) 1982-02-01
GR75714B (pl) 1984-08-02
PT73289B (en) 1983-05-11
EP0043980A3 (en) 1982-09-15
ES503528A0 (es) 1982-10-01
DZ312A1 (fr) 2004-09-13
EP0211148B1 (en) 1992-08-26
PL231940A1 (en) 1983-07-18
SU1414319A3 (ru) 1988-07-30
AT380272B (de) 1986-05-12
ATE79901T1 (de) 1992-09-15
DK173543B1 (da) 2001-02-05
CS273152B2 (en) 1991-03-12
PT73289A (en) 1981-07-01
SE8104093L (sv) 1982-01-02
FI82712B (fi) 1990-12-31
FR2486098B1 (fr) 1985-12-27
BG42189A3 (en) 1987-10-15
YU162281A (en) 1984-02-29
EP0043980A2 (en) 1982-01-20
DE3125706C2 (de) 1995-05-24
EP0043980B1 (en) 1987-09-16
EP0211148B2 (en) 1999-11-24
DE3125706A1 (de) 1982-04-15
BR8104189A (pt) 1982-03-16
AR242833A1 (es) 1993-05-31
SE465223C5 (sv) 1998-02-10
AU552004B2 (en) 1986-05-22
DE3176448D1 (en) 1987-10-22
NO159392B (no) 1988-09-12
SE465223B (sv) 1991-08-12
MC1396A1 (fr) 1982-04-27
EP0211148A1 (en) 1987-02-25
ES8207514A1 (es) 1982-10-01
PL148261B1 (en) 1989-09-30
DE3177288D1 (de) 1992-10-01
DE3177288T3 (de) 2000-03-16
DD210304A5 (de) 1984-06-06
LU83461A1 (de) 1983-04-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL148260B1 (en) Method of obtaining mature interferon of human leucocytes
US6482613B1 (en) Microbial production of mature human leukocyte interferons
US4456748A (en) Hybrid human leukocyte interferons
US4678751A (en) Hybrid human leukocyte interferons
JP2515308B2 (ja) ヒト免疫インタ−フエロン
AU601675B2 (en) Purification, production and use of tumor necrosis factors
CA1341569C (en) Microbial production of human fibroblast interferon
KR920007439B1 (ko) 하이브리드 인간 백혈구 인터페론
US4801685A (en) Microbial production of mature human leukocyte interferon K and L
JPS6363199B2 (pl)
US4810645A (en) Microbial production of mature human leukocyte interferon K and L
KR870000510B1 (ko) 형질전환된 미생물의 제조방법
FI82713C (fi) Plasmid, som foermaor expressera humant moget leukocytinterferon, foerfarande foer dess framstaellning samt dess anvaendning vid framstaellning av humant leukocytinterferon.
SE453512B (sv) Menniskoleukocytinterferon n och forfarande for framstellning derav i bakterieceller
KR870000511B1 (ko) 발현 비히클의 제조방법
IL63197A (en) Intraferons for mature human oocytes, their preparation and preparations containing them
LIU et al. Expression of a Pseudogene for Interferon-αL
Goeddel Microbial production of mature human leukocyte interferons
CS273181B2 (en) Method of escherichia coli cells production that are capable to produce mature human leucocytic interferon
NO164178B (no) Plasmid som koder for et ferdigutviklet human leukocyttinterferon.
NZ214261A (en) Human immune interferon: production by recombinant dna technology