JPS62501607A - 組換コロニ−刺激因子↓−１ - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 組換コロニー刺激因子−１ この発明は、通常低濃度で生産されるリンホカインの製造のための組換技法の使 用に関する。さらに詳しくは、この発明はヒト−コロニー刺激因子−１（ＣＳＦ −１）をコードするＤＮＡ配列のクローニング及び発現に関する。

種々の組織中で非常に低濃度で生産される若干の因子の、骨髄前駆細胞の増殖及 び顆粒球及び／又はマクロファージへの発達を刺激する能力が最近１５年来知ら れて来た。多数の種からの血清、尿サンプル及び組織抽出物中でのこれらの因子 の存在は、半固体培地中にプレートされた骨髄細胞によるコロニー形成の刺激を 測定するインビトロ゛測定法を用いて示される。これらの因子は、このようなコ ロニーの形成を誘導するため、コロニー刺激因子（ｃｏｌｏｎｙ　ｓｔｉｍｕｌ ａｔｉｎｇ　ｆａｃｔｏｒ　；ＣＳＦ　）と総称されている。

一層最近になって、生ずるコロニー中に見出される細胞のタイプに従って定義さ れ得るヒトＣ３Ｆ蛋白質の少なくとも４つのサブクラスが存在することが示され た。１つのサブクラスＣ５Ｆ−１は主としてマクロファージを含有するコロニー をもたらす。他のサブクラスは、好中顆粒球及びマクロファージの両者を含有す るコロニー、もっばら好中顆粒球を含有するコロニー、及び好中顆粒球及び好酸 顆粒球並びにマクロ上記しトＣＳＦの最初の３種類に類似するネズミの因子が存 在する。さらに、ＩＬ−３と称されるネズミ因子はネズミ骨髄細胞からコロニー を誘導し、このコロニーはこれらすべての細胞タイプのほかに巨核球、赤血球、 及び肥満細胞を種々の組み合わせで含有する。これらのＣ９Ｆ類はＤｘｔｅｒ、 Ｔ、阿、。

Ｎａｔｕｒｅ（１９８４）３０旦：　７４６　；及びＶａｄａｓ、Ｍ、＾３等、 Ｊ　、　Ｉｍｍｕｎｏ　ｌ　、　（１９８３）見立ニア９３に総説されている。

この発明は、これらのサブクラスの第１の構成員である蛋白’１ＣＳＦ−１の組 換製造に関する。このサブクラスは特異的ラジオイムノアッセイ及びラジオリセ プターアッセイによりさらに特徴付けられそして描写されている・・・・・・・ ・・例えば、精製されたＣ５Ｆ−１に対して生じた抗体は他のサブクラスの生物 学的活性に影響を与えることなくＣ５Ｆ−１活性を特異的に抑制することができ 、そしてマクロファージセルラインＪ７７４はＣ５Ｆ−１に特異的に結合するり セブターを含有する。これらのアッセイの記載はＤａｓ、Ｓ、に、等、Ｂｆｏｏ ｄ（１９８１）５８　：　６５０により発表されている。

種々のＣ８Ｆ蛋白質の精製方法が発表されている。

５ｔａｎｌｅｙ、Ｅ、Ｒ，等、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、（１９７７）５２　： 　４３０５はネズミＬ９２９．１（１を胞からのＣ８Ｆ蛋白質の約１×１０８ユ ニツト／ｌ１１ｇまでの精製を報告したが、これも主としてマクロファージ生産 を刺激した。Ｗａｈｅｅｄ　、八、１等肛ｏｏｄ　（１９８２）　６０　：　２ ３８はラビット抗体カラムを用いることによるマウスＬ−細胞Ｃ５Ｆ−１の見か け上均−への精製を記載し、そしてネズミ配列の最初Δｃａｄ、ｓｃｉ　（ＵＳ Ａ　（１９８５）　８８２　：　４４８６　）。

５ｔａｎｌｅｙ、Ｅ、Ｒ，等、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅ＋ｏ、（１９７７）　２５ ２　：　４３０５−４３１２は、人尿からのＣ５Ｆ−１の精製方法を開示し、そ してＤａｓ、Ｓ、に、等、旧ｏｏｄ　（１９８１）　５８　：　６３０　；　Ｊ 、Ｂｉｏｌ　、Ｃｈｅｍ、　（１９８２）　２５ヱ：　１３６７９はマクロファ ージコロニーのみを生成する人尿Ｃ５Ｆ−１を５×１０７ユニツト／ｖｎｇの比 活性で得、そして培養されたマウスＬ−細胞から及び人尿から調製されたＣ５Ｆ −１蛋白質のグリコジル化とそれらの活性との間の関連を要約している。　Ｗａ ｎｇ。

Ｆ、Ｆ、等、Ｊ、Ｃｅ１ｌ　Ｂｉｏｃｈｅ＋ｎ、　（１９８３）　２１　：　２ ６３は人尿Ｃ５Ｆ−１を１０”Ｕ／…ｇの比活性で単離した。ｌ’ｔａｈｅｅｄ 　、Δ１等はラビット抗体カラム上での人尿Ｃ５Ｆ−１の０．７〜２．３Ｘ　１ ０’Ｕ／ｍｇの比活性への精製を開示している。〔も」−に二〇よ（１９８４） 　１２　：　４３４）。

Ｗｕ、Ｍ、等、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、　（１９７９）　２５４　：　６２２ ６は培養されたヒト膵臓癌（ＭＩＡＰａＣａ）細胞からのＣ３Ｆ蛋白質の調製を 報告しており、これはネズミ顆粒球及びマクロファージコロニーの増殖をもたら す。得られた蛋白質は約７Ｘ１０’ユニツト／Ｂの比活性を有していた。

種々のＣＳＦの部分的に精製された調製物も報告されており、これらはヒト及び ネズミ肺細胞条件化（ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ　）培地から（Ｆｏｊｏ、Ｓ、Ｓ 、等、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　（１９７８）　１７　：　３１０９　；　Ｂ ｕｒ−ｇｅＳｅＳ＋Δ、Ｗ、等、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、　（１９７７）２５ ２　：　１９９８）　、ヒトＴ−リンパ芽球細胞から（Ｌｕｓｉｓ、＾、Ｊ０等 、一旦（１９８１）　５７　：　１３；米国特許Ｎｏ、４，４３８，０３２）　 、ヒト胎盤条件化培地から見かけ上均−にそして７　Ｘ　１０　’Ｕ／ｍｇの比 活性にロｕ、Ｍ、等、即ｙ直−９ｂ復ア（１９８０）硯：　３８４６）得られた 。

一般にＣ８Ｆ蛋白質に、そして特にＣ５Ｉ−１になんらかの有用な機能を行わせ ることの有意な困難性は、それらを実際に又は可能性としてさえ療法的に使用す るのに十分な量で、区別し得るそして特徴付は得る形態で入手することができな いことであった。この発明は組換技法により有用な量で精製されたヒト及びネズ ミＣ５Ｆ−１を提供することによってこれらの不足を救済する。

〔異るサブクラスのＣ３Ｆ蛋白質、ネズミ及びヒトＧＭ−ＣＳＦが精製され、そ してｃＤＮＡがクローン化された。この蛋白質は他のＣ３Ｆ、例えばＣ５Ｆ−１ と異ることがＧｏｕｇｈ等、Ｎａｒｕｒｅ　（１９８４）　３０旦：　７６３− ７６７により示された。ネズミＩＬ−３はＦｕｎＨ，Ｍ、Ｃ，等によりクローン 化された（Ｍ、Ｃ，Ｆｕｎｇ等、Ｎａｔｕｒｅ（１９８４）３０ヱ：　２３３） 　、さらに、Ｙｏｋｏｔａ、Ｔ、等胆ＡＳ（１９８４）８１　：　１０７０−１ ０７４　；　Ｗｏｎｇ、Ｇ、（：、等、５ｃｉｅｎｃｅ　（１９８５）　２２８ 　：　８１０−８１５　；　Ｌｅｅ、Ｆ、等、ＰＮＡＳ（１９８５）８２　：　 ４３６０−４３６４　、及びＣａｎｔｒｅｌ　Ｉ　。

８、Δ１等、胆酸（１９８５）険：　６２５０−６２５４を参照のこと〕。

ル豐百且丞− １つの観点において、この発明は組換Ｃ５Ｆ−１蛋白質に関し、これには天然蛋 白質の一層アミノ酸配列の変更を含む生物学的に活性な蛋白質が包含される。組 換形のＣ５Ｆ−１蛋白質は多量に得られ、宿主により提供される翻訳後プロセシ ングの制御により有利に修飾され得、そしてその望ましい性質を増強するために 遺伝子レベル又は蛋白質レベルで意図的に変形され得る。例えば、ポリペプチド のカルボキシ末端の３分の１の実質的部分の欠失を有するミューティンは活性で ある。ずなわち、組換形のＣ５Ｆ−１の入手可能性は天然蛋白質に関しては得ら れない柔軟性及び幾つかの量的利点を提供し、このため蛋白質の療法的適用を可 能にする。

他の観点において、この発明は組換Ｃ５Ｆ−１をコードする単離されたＤＮＡ配 列、この配列のための組換発現系及びこれらを含有するベクター、これらのベク ターにより形質転換されな組換宿主、並びに組換蛋白質を生産する培養物に関す る。この発明はさらに組換蛋白質の製造方法及びその製造において重要な材料に 関する。

さらに、この発明は医薬的及び療法的適用において有用なＣ５Ｆ−１を含有する 組成物、及びこのような組成物の使用方法に関する。

１服Ｏ隨肌ゲ護肌 第１図は精製された天然蛋白質から決定された、人尿Ｃ５Ｆ−１及びネズミＬ− ９２９細胞Ｃ５Ｆ−１の部分的アミノ酸配列を示す。

第２図はネズミＣ５Ｆ−１のための幾つかのオリゴマープローブの配列を示す。

第３図はヒトゲノムＣ５Ｆ−１を得るために使用されるオリゴマープローブの配 列を示す。

第４図は、ヒトＣ３Ｆ−１配列をコードする３、９ｋｂ　ＨｉｎｄＩＩＩ断片の 配列決定された部分、及びエクソン領域について推定されたアミノ酸配列を示す 。

第５図はＣ５Ｆ−１をコードするｃＤＮＡクローンＤＮＡ配列及び推定されるア ミノ酸配列を示す。

第６図は、Ｃ５Ｆ−１及び他のコロニー刺激因子の、腫瘍細胞を殺すマクロファ ージの能力を増強する活性の比較を示す。

第７図はＭＩＡＰａＣａ　ｍＲＮ　Ａのジュークロース・グラジェント分画の結 果を示す。

ル朋禾」ａヒるためＣ１梗 Ａ、定識− ゛′コロニー刺激因子−１（ＣＳＦ−１）”は、当業界においてＣ５Ｆ−１につ いて理解されている活性のスペクトルを示す蛋白質を意味する・・・・・・すな わち、Ｍｅｔｃａｌｆ、Ｐ、Ｊ、Ｃｅ１ｌ　Ｐｈｙｓｉｏｌ。

（１９７０）　７６　：　８９の標準的インビトロコロニー刺激アッセイに適用 した場合に、このものは−次マクロファージコロニーの形成をもたらす、天然Ｃ ５Ｆ−１はグリコジル化されたダイマーであり；活性のなめにダイマー化が必要 である。ダイマー形及びモノマー形の両者がこの発明の範囲内及びＣ５Ｆ−１の 定義内のものと意図される。モノマー形は細胞内条件のインビトロでの提供によ りダイマーに転換され、そしてモノマーはそれ自体抗−ＣＳＦ−１抗体を生産す るための抗原として有用である。

幾つかの種特異性が存在するようであり、ヒトＣ５Ｆ−１はヒト及びネズミの両 者の骨髄細胞に対して作用可能であり；ネズミＣ５Ｆ−１はヒト細胞について活 性を示さない。従って、″゛ヒトＣ５Ｆ−１、完全な相互関係が必然的に存在す るわけてはないにしても、Ｄａｓ、Ｓ、に、等、…旦（１９８１”）　５８　： 　６３０の特異的ネズミラジオリセブターアッセイにおいて陽性であるべきであ る。この蛋白質の生物学的活性は一般にまた、人尿Ｃ５Ｆ−１に対する中和抗血 清によっても阻害されるであろう（Ｄａｓ。

Ｓ、に、等、前掲）。しかしながら、ある特別な状況（例えば、特定の抗体調製 物が生物学的機能のために必須でないＣＳＦ　−１エピトープを認識し、そして このエピトープが試験される特定のＣ５Ｆ−１ミユーテイン中に存在しない場６ のごとき）においては、この基準は妥当しないであろう。

Ｃ５Ｆ−１の幾つかの他の性質が一層最近になって認識されたが、これらの性質 は一連のＥプロスタグランジン、インターロイキン−１、及びインターフェロン の成熟マクロファージからの分泌を刺激するこの蛋白質の能力を含む（Ｍｏｏｒ ｅ、Ｒ。

等、５ｃｉｅｎｃ引（１９８４）　２２３　：　１７８）　、これら後者の活性 のための機作は現在のところ理解されておらず、そしてここでの定義のため、定 義の達成のための基準は出発材料として適切な種からの骨髄細胞を使用しての単 核球／マクロファージコロニーの形成を刺激する能力、はとんどの状況（上記を 参照のこと）のもとての精製人尿Ｃ５Ｆ−１に対する中和抗血清によるこの活性 の阻害、及び種タイプについて適切な場合にはラジオリセプターアッセイに対す る陽性反応に存在する。（ＣＳＦ　−１の増殖効果が単核性貧食性系統の細胞に 限定されること（Ｓｔａｎｌｅｙ、Ｅ、Ｒ，’　、Ｔｈｅ　Ｌｙ＋動ｏｋｉｎｅ ｓ（１９８ｉ）　、Ｓｔｅｗａｒｔ、Ｗ、Ｅ、　、　ＩＩ、等編集、Ｉｌｕｍａ ｎａ　Ｐｒｅｓｓ、クラストン、ＮＪＪＯ２−１２３頁）、並びにＣ５Ｉ−１の りセブターがこれらのセルラインに限定されること（ｔｌｙｒｎｅ、Ｐ、Ｕ、等 、Ｃｅ１ｌ　Ｂｉｏｌ、（１９８１）９１　：　８４８）が知られている。〕 すべての蛋白質の場合と同様に、正確な化学構造は多数の因子に依存する。分子 中にイオン化可能なアミノ基及びカルボキシル基が存在する場合、特定の蛋白質 が酸性塩もしくは塩基性塩として、又は中性の形で得られる。適当な環境条件に 置かれた場合にそれらの活性を維持しているそれらすべての調製物が定義に含ま れる。さらに、−次アミノ酸配列に、糖成分を用いる誘導体化（グリコジル化） により又は他の補足的分子、例えば脂質、ホスフェート、アセチル基等により、 さらに一般的にはサツカライドとの接合により、付加を行うことができる。−次 アミノ酸構造はまた集合して複合体、最もしばしばダイマーを形成することがで きる。たしかに、天然人尿Ｃ５Ｆ−１は４５ｋｄの高度にグリコジル化されたダ イマーとして単離される。このよな付加の幾つかの観点は生産宿主の翻訳後プロ セシング系により達成され、このような他の変形はインビトロで導入される。と もかく、このような変形は、上に定義した蛋白質の活性が破壊されない限り定義 に含まれる。言うまでもなく、このような変形は種々のアッセイにおいて蛋白質 の活性を増強し又は低下せしめることにより活性に旦的又は質的な影響を与える であろうことが予想される。

さらに、鎖中の個々のアミノ酸残基を酸化、還元、又は他の誘導体化により変形 することができ、そして蛋白質を切断して活性を維持している断片を得ることが できる。活性を破壊しないこのような変形は蛋白質配列を定義から排除しない。

翻訳中に配列中に導入されるアミノ酸の欠失、付加又は変更により一次構造それ 自体に対する変形を、蛋白質の活性を喪失することなく行うことができる。この ような置換又は他の変更は’Ｃ５Ｆ−１のアミノ酸配列と実質的に同一のアミノ 酸配列を有する°′蛋白質の定義に属するアミノ酸配列を有する蛋白質をもなら す。確かに、ヒト及びネズミ由来Ｃ５Ｆ−１蛋白質は、高い相同性を示す、同一 ではないが類似の一次アミノ酸配列を有する。

便宜上、ここに例示されるｃＤＮＡクローンがら推定される第５図中に示される 、ダイマー蛋白質のモノマー部分の成熟蛋白質アミノ酸配列を＋ｎＣ５Ｆ１（成 熟Ｃ５Ｆ−１）と称する。

第５図は、哺乳類細胞からの分泌の際におそらく開裂されるであろう３２残基の 推定上のシグナル配列の存在を示す。

ｍＣ５Ｆ−１はこの図においてアミノ酸１−２２４により代表される。

具体的には、そのモノマー及びダイマーがｍＣ５Ｆ　１、及び＋ｎＣ５Ｆ　１か らのそれらの差異により命名される＋ｎＣ５Ｆ−１の関連形がヒトＣ５Ｆ−１の 定義に含まれる。他の種に由来するＣ５Ｆ−１−は、ヒト基質について上に示し た活性の必要なパターンを示すことによりパヒト′”Ｃ３Ｆ−１の定義に妥当す る。

やはり便宜上、ｍＣ５Ｆ−１のアミノ酸配列が参照として使用され、そしてＣ５ Ｆ−１活性の点でこれと実質的に同等である他の配列が第５図中に示される配列 に言及することにより命名されるであろう。特定のアミノ酸の置換は、それを代 替するアミノ酸残基への言及により示されるであろう。従って、例えば、５ｅｒ ｓｏＣＳＦ　１は９０位のアミノ酸がシスティンではなくセリンである点を除き 第５図中に示される配列を有する蛋白質を意味する。欠失は△と、これに続くＮ −末端配列から除去されたアミノ酸の個数により、あるいは残基がＣ−末端配列 から除去される場合には、残りのアミノ酸配列の個数とこれに続くマイナス記号 により示される。すなわち、△。

Ｃ５Ｆ−１はＮ−末端からの最初の４個のアミノ酸が欠失している第５図のＣ５ Ｆ−１を意味し；ΔＩｎｔｏ−はアミノ酸１３０に続く最後の９４個のアミノ酸 が欠失しているＣ５Ｆ−１を意味する。

例えば、５９位においてｃＤＮＡによりコードされるチロシン残基ではなく遺伝 子（第４図）によりコードされるアスパラギン酸残基を含むａｓｐｓｓｃｓＦ　 ｌ　、及びｔｎＣ５Ｆ　−１のアミノ酸１−１５８のみから成るΔ１５１１　Ｃ ＳＦ　１を下記に例示する。

”作用可能に連結された”（ｏｐｅｒａｂｌｙ　Ｉ　１ｎｋｅｄ　）なる語は、 構成成分の正常な機能が達成され得るような並置を意味する。

すなわち制御配列に“作用可能に連結された”コード配列は、これらの配列の制 御のもとに該コード配列が発現され得るような配置を意味する。

゛″制御配列′°は、特定の宿主生物中で、作用可能に連結されたコード配列の 発現のために必要なりＮＡ配列を意味する。

原核生物のために適当な制御配列は、例えば、プロモーター、場合によってはオ ペレーター配列、リボゾーム結合部位、及びおそらく他の従来あまり理解されて いない配列を包含する。

真核生物はプロモーター、ポリアゾニレ−ジョンシグナル及びエンハンサ−を用 いることが知られている。

″“発現系パは、目的とするコード配列及び作用可能に連結された制御配列を含 有するＤＮＡ配列であって、これらの配列により形質転換された宿主がコードさ れた蛋白質を生産することができるようなりＮＡ配列を意味する。形質転換を行 うためには、発現系がベクター上に導入されることができ、しかしながら該当す るＤＮＡはさらに宿主の染色体中に取り込まれることもできる。

ここで使用する場合、“細胞′°、“細胞系′°（セルライン）、及び“細胞培 養物゛′は相互交換的に使用され、そしてこれらすべての名称は子孫を含む、す なわち、“形質転換体”又は“形質転換された細胞”は−次対象細胞、及び経代 の数に関係なくこれらに由来する培養物を包含する。意図的な又は非意図的な変 異に基き、すべての子孫がＤＮＡ含有において正確に同一であるとは限らないこ とが理解される。最初に形質転換された細胞においてスクリーニングされたのと 同一の機能を有する変異体子孫が含まれる。区別された命名が意図される場合、 それは文脈から明らかであろう。

Ｂ、二辰旌【鞍 この発明のＣ３Ｆ−１蛋白質は、骨髄前駆細胞からの単球−前駆体／マクロファ ージ細胞の生産を刺激して免疫系の効率を増強すること、及び成熟マクロファー ジにおけるリンホカインの分泌のごときこれらの分化した細胞の機能を刺激する こと、の両者を行うことができる。

１つの用途において、これらの蛋白質は化学療法への付加物として有用である。

化学療法剤による治療が免疫系の抑制をもたらすことはよく理解されている。し ばしば、これらがそれに対して向けられている腫ｍＫ（’Ｉ胞を破壊することに 成功したとしても、化学療法剤による治療は免疫系の細胞に対する化学毒性剤の この副作用のなめに対象の死をもたらす。このような患者ｌ＼のＣ５Ｉ−１の投 与は、骨髄由来前駆細胞の増殖及びマクロファージへの分化を中介しそして増強 するＣ５Ｆ−１の能力のために、免疫系の再刺激をもならし、これによってこの 副作用が回避され、そして患者が二次感染に倒れる傾向が回避される。このよう な治療によって救済されるであろう他の患者には、骨髄移植によって白血病の治 療をされる患者が含まれる。これらはしばしば、拒絶を回避するために免疫抑制 状態にある。これらの患者についても、Ｃ５Ｆ−１の投与により免疫抑制が逆転 され得るであろう。

一般に、化学療法、骨髄移植、又は疾患（例えば後天性免疫不全症候群）のごと き他の偶然的な形の免疫抑制のいずれかにより免疫抑制にかかっているすべての 対象は、薬理学的使用のためＣ５Ｆ−１の入手可能性により利益を得るであろう 。

さらに、生来的な系のそれを補足するために、Ｃ５Ｆ−１により処理された骨髄 又は他の適当な調製物のインビトロ培養により生産されるすでに分化したマクロ ファージの増加した量を患者に提供することができよう。これらの調製物には、 培養され、そして局所療法又は全身療法のために返還され得る患者自身の血液単 球の調製物が含まれる。

マクロファージによるリンホカインの生産を刺激し、そして標的細胞を殺す能力 を増強するＣ５Ｆ−１の能力はまた、新生物及び感染の治療においてＣ５Ｆ−１ を直接有用なものとしＣ５Ｆ−１はネズミ由来マクロファージによるインターフ ェロンの生産を刺激しくＦＩｅｉＬ、Ｉｌ、Ｂ、等Ｊ、ＣｃｌしＰｂｙｓｉｏｌ 　、　（１９８１）ｔｏｓ　：　３４７）　、そしてＭＩ＾ＰａＣａ　ＭＦｒ胞 からのヒトの部分的に精製されたＣ５Ｆ−１は、後に示すように、ヒト単球から のインターフェロン及びＴＮＦのポリＩＣ−誘導生産を刺激する。さらに、Ｃ３ Ｉ−１はヒト血液単球によるミニロイドＣＳＦの生産を刺激する。

さらに、ネズミ肉腫ＴＵ５標的を殺すために正常Ｃ３Ｈ／ＨｅＷマウス末梢マク ロフアージを刺激するネズミＣ５Ｆ−１（１、−細胞−条件化培地から）の能力 の証明を下−記に示す。この活性は、ｅｓｌｌが前処理として、そしてエフアク タ−期間の間に使用される場６に最も有効である。これを行うＣ５Ｆ−１の能力 は、後で第６図に示す他のコロニー刺激因子により示されるそれよりも非常に大 きい。さらに、ウィルスを攻撃するネズミ細胞の能力はＣ５Ｆ−１により非常に 増強される。

にネズミマクロファージを刺激するとして、又は他の白血病標的を殺さない（Ｒ ａｌｐｈ、Ｐ、等、Ｃｅｌ１■ｍｆｎｕｎｏ１．（１９８３）　７６１０）とし て、一貫性なしに報告されている。Ｎｏｇａｕ＋ａ、Ｒ，Ｔ、等、（、ｅＩＩ■ 「ｏ＋ｏｕ１１ｏ１．（１９８０）　５３　：　１１６は、Ｃ５Ｆ−１が酵母を 摂食しそして殺すようにマクロファージを刺激することを報告している。〕 従って、免疫抑制それ自体の克服に加えて、Ｃ５Ｆ−１は、マクロファージの分 泌及び活性の刺激により間接的に侵入生物又は悪性細胞を破壊するため使用され 得る。

この発明のＣＳＩ”−１は、蛋白質物質の投与のために当業界において標準的な 常法において製剤化され得る。注射による投与が好ましく、製剤は溶液もしくは 懸濁液、乳剤、又は注射可能に再構成するための固体組成物を包含する。適当な 賦形剤は例えばリンゲル溶液、バンク溶液、水、塩溶液、グリセリン、デキスト ロース溶液等を包含する。さらに、この発明のＣ５Ｆ−１を該当する反応を刺激 するために細胞の調製物と共にプレインキュベートレ、そして全調製物又はその 上清を対象に導入することができる。後に示すように、Ｃ３Ｆ−１刺激に反応し て種々のタイプの血液細胞により生産される物貰は所望の標的に対して効果的で あり、そして侵入ウィルス又は新生物を攻撃するこれらの血液細胞自体の性質が 増強されるてあろう。対象自体の細胞を取り出し、そしてこの方法において使用 することができ、あるいは例えば、他の適合性個体からの単球又はリンパ球をイ ンキュベーションにおいて使用することができる。

Ｃ５Ｆ−１と称する活性のパターンの存在はしばらくの間知られているが、対応 する蛋白質は配列決定を可能にするのに十分な純度及び十分な量においても、有 用な療法的機能を得るのに十分な純度及び量においても得られていない。完全に 純粋な実際酌量の蛋白質も、そのコード配列も得られていないので、上記Ａ項に おいて記載したような代替物を提供するために構造への変形を最適にすることも 不可能であり、療法的観点においてこの蛋白質を使用することも不可能であった 。

この発明はこれらの欠点を補う。種々の追加の精製手順を通して、若干のアミノ 酸配列を提供するのに十分な純度のＣ５Ｆ−１が人尿から得られ、従ってＤＮＡ オリゴマープローブの造成が可能となった。このプローブは完全蛋白質のコード 配列を得るのに有用である。下に例示される１つの方法は、適当なコード配列部 分を得るためにヒトゲノムライブラリーをプローブするためにヒトＮ−末端配列 ついて設計されたプローブを用いる。ヒトゲノムクローン化配列はそれ自体の制 御配列を用いて直接に、又はイントロンをプロセシングすることができる哺乳類 系に適する造成物中で発現され得る。

Ｃ５Ｉ−１を生産するセルラインから得れたヒトゲノムライブラリーのためのプ ローブとしてゲノム配列を使用してこの蛋白質をコードするｃＤＮＡが得られる 。ｃＤＮＡは、適切に調製された場か、ＣＯ８又はＣＶ−１細胞中で直接発現す ることができ、また広範囲の宿主中での発現に適するベクターに造成することが できる。

従って、これらの道具はヒトＣ５Ｆ−１のための完全コード配列を提供すること ができ、これから種々の宿主系に適する発現ベクターを造成することができ、そ してコード配列が発現される。入手し得る種々の宿ｆ及び該宿主のために適当な 発現ベクターが翻訳後プロセシング系中の、及びこうして生産された蛋白質のコ ンボーメ−ジョン制御をもならす環境因子の選択を可能にする。

Ｃ１適肯肴１ＵへＵＬ御糸入でり戸り 一般に、組換形のＣ５Ｆ−１の製造は次のことを含む：まず、成熟（ここでは、 すべてのミューティンを含む意味で使用される）蛋白質、プレ蛋白質、又はＣ５ Ｆ−１蛋白質とその活性を破壊しない追加の配列又は制御された条件下（例えば ペプチダーゼによる処理）で開裂されて活性な蛋白質をもたらす追加の配列との 融合体をコードするＤＮＡを得る。

配列がイントロンにより中断されていない場合、これは任意の宿主中での発現の ために適当である。イントロンが存在する場合、これらをプロセシングすること ができる吐乳動物系又は他の真核生物系において発現が得られる。この配列は切 り出し可能であり且つ回収可能な形であるべきである０次に、切り出され又は回 収されたコード配列は複製可能な発現ベクター中で適当な制御配列と作用可能に 連結される。このベクターが適当な宿主を形質転換するために使用され、そして 形質転換された宿主が組換ＣＳＩ”−１の生産を行うのに好都合な条件下で培養 される。場合によっては、Ｃ５Ｆ−１が培地から又は細胞から単離される。幾ら かの不純物が許容される幾つかの場合においては、蛋白質の回収及び精製は必要 でない。

例えば、対象に投与するなめにリンホカイン因子が単離されるであろう細胞のイ ンビトロ培養のためには完全な純度は必要でない。しかしながら、対象に投与す ることによる療法における直−接的使用は、言うまでもなく生産されたＣ５Ｆ− １の精製を必要とするであろう。

上記の段階のそれぞれは種々の方法で行うことができる。

例えば、所望のコード配列は、細胞性メツセンジャーから適当なｃＤＮＡを調製 し、そしてこのｃＤＮＡを操作して完全配列を得ることにより、得ることができ る。別の方法として、ゲノム断片を得、そして適切な宿主中で直接使用すること ができる。種々の宿主中で作用可能な発現ベクターの造成は、後に記載するよう に、適切なレプリコン及び制御配列を用いて行われる。天然に得られなければ適 当な制限部位をコード配列の末端に付加して、これらのベクターに挿入するため に切出し可能な遺伝子を得ることができる。

制御配列、発現ベクター、及び形質転換法は遺伝子を発現するために使用される 宿主細胞のタイプに依存する。一般に、原核細胞、酵母、又は哺乳類細胞が現在 のところ宿主として有用である。天然Ｃ５Ｆ−１はグリコジル化されたダイマー として分泌されるので、適切な翻訳後プロセシングを行うことができる宿主系が 好ましい。従って、一般に、原核性宿主が組換蛋白質の生産のために最も効率的 でありそして便利であるが、これらのプロセシングが可能であるためには真核細 胞、そして特に哺乳類細胞が好ましい。細菌により生産される組換Ｃ５Ｉ−１は インビトロでのダイマー化を必要とするであろう。さらに、天然シグナル配列が 哺乳類細胞によって確認され、分泌を可能にし、そしてそれ故に精製を容易にす るであろうという二層の確信が存在する。

よって代表される。しかしながら、他の微生物株、例えばバジルス、例えばバシ ルス・ズブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ　５ｕｂｔ１山−）、シュードモナス（Ｐ ｓｅｕｄｏ＋ｎｏｎａｓ　）　の色々な種、又は他の細菌株を使用することもで きる。このような原核系においては、宿主と適合性の種に由来する複製部位及び 制御配列を含有するプラスミドベクターが使用される。例えば、Ｅ、コリは典型 的には、Ｂｏｌｉｖａｒ等、Ｇｅｎｅ　（１９７７）　２　：　９５によってＥ 、コリ種から誘導されたプラスミドであるｐＢＲ３２２の誘導体を用いて形質転 換される。ｐ１３Ｒ３２２はアンピシリン及びテトラサイクリン耐性の遺伝子を 含有し、そしてそれ故に所望のベクターの造成においてｔ、ｆｔ持され得るか又 は破壊され得る追加のマーカーを提供する。この明細書において転与開始のため のプロモーター、場合によってはオペレーター、及びリボゾーム結合部位配列を 含むものとして定義される、一般に使用される制御配列は、β−ラクタマーゼ（ ベニシリナーゼ）及びラクトース（ｌａｃ）プロモーター系（ＣＩ＋ａＢ等、Ｎ ａｔｕｒｅ（１９７７）１９旦：　１０５６）及びトリプトファン（ｔｒｐ）プ ロモーター系〔Ｇｏｅｄｄｅ！等、Ｎｕｃｌｅｉｃ、八ｅｉｄｓ　Ｒｅｓ、（１ ９８０）　８　：　４０５７）　、並びにＰＬプロモーター及びＮ−遺伝子リボ ゾーム結合部位（Ｓｈ　ｉｍａｔａｋｅ等、Ｎａｔｕｒｅ（１９８１）　２９２ 　：　１２８）　（これは、１９８４年２月８日に出願され同一の承継人に承継 された係属中の出願Ｎｏ、５７８　、１３３中に記載されているように、ポータ プル制御カセットとして有用にされている）のごとき一般に使用されるプロモー ターを包含する。しかしながら、原核生物と適合性の任意の入手可能なプロモー ター系を使用することができる。

細菌に加えて、真核性微生物、例えば酵母を宿主として使用することもできる。

パン酵母サツカロミセス・セレビシェ−（踵刈胱刈朕刈辷刈刈柱吐牲）の実験室 様が最も使用される。但し、他の多、くの株も一般に入手可能である。２ミクロ ン複製開始点を用いるベクターが例示される（Ｂｒｏａｃｈ、Ｊ、Ｒ，。

Ｍｅｔｈ　Ｅｎｚ、（１９８３）　１０１　：　３０７）が、酵母での発現に適 当な他のプラスミドベクターが知られている〔例えば、５ｔｉｎｃｈｃｏ＋ｎｂ 等、Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）　２８２　：　３９、Ｔｓｃｈｅｍｐｅ等、Ｃｅ ｖｅ（１９８０）１０　：　１５７、及びＣ１ａｒｋｅ、Ｌ、等Ｍｅｔｈ、Ｅｎ ｚ、（１９８３）　１０１　：　３００〕、酵母ベクターのための制御配列は、 解糖系酵母の合成のためのプロモーターを包含する（Ｉｆｅｓｓ等、Ｊ、Ａｄｖ 、Ｅｎｚ　ｍｅ　Ｒｅ　、（１９６８）７　：　１４９゜１１ｏ１１ａｎｄ等、 Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（１９７８）　１７　：　４９００）　、当業界にお いて知られている他のプロモーターは、３−ホスホグリセレートキナーゼのため のプロモーター（ｌｌ１ｔｚｅ＋ｎａｎ等、Ｊ、Ｂｉｏｌ。

艶μｎ、（１９８０）２５５　：　２０７３）　、並びに他の解糖系酵素、例え ばグリセルアルデヒド−３−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、 ピルベートデカルボキシラーゼ、ホスホフラクトキナーゼ、グルコース−６−ホ スフェートイソメラーゼ、３−ホスホグリセレートムターゼ、ピルベートキナー ゼ、トリオースホスフェートイソメラーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、及 びグルコキナーゼのそれを包含する。転写が増殖条件により制御されるという追 加の利点を有する他のプロモーターはアルコールデヒドロゲナーゼ２、イソチト クロームＣ１酸性ホスフアターゼ、窒素代謝に関連する分解酵素、並びにマルト ース及びガラクトースの資化を担当する酵母（ｌｌｏｌｌａｎｄ、前掲）のため のプロモーター領域である。さらに、コード配列の３′末端にターミネータ−配 列が望ましいと信じられる。このようなターミネータ−は、酵母由来遺伝子のコ ード配列に続く３′非翻訳領域中に見出される。例示されるベクターの多くが、 エノラーゼ遺伝子含有プラスミドｐｅｎｏ４６　（Ｉ［ｏｌｌａｎｄ、Ｍ、Ｊ、 笠、Ｊ、Ｂｉｏ！、Ｃ１＋ｅｍ、（１９８１）　２５６　：　１３８５）由来の 制御配列又はＹＥｐ１３　（Ｂｒｏａｃｈ、Ｊ、等、Ｇｅｎｅ（１９７８）８　 ：　１２１）から得られたＬＥＵ２遺伝子を含有するが、しがしながら、酵母に 適き性のプロモーター、複製開始点及び他の制御配列を含有する任意のベクター が適当である。

言うまでもなく、多細胞生物由来の真核性宿主細胞培養物中でポリベブヂドをコ ードする遺伝子を発現させることも可能である。例えば、Ｔｉ５ｓｕｅＣｕ１ｔ ｕｒｅ、アカデミツクプレス、Ｃｒｕｚ及びＰａＬｔｅｒｓｏｎｍ！　（１９７ ３）を参照のこと、有用な宿主細胞系はネズミ骨髄腫Ｎ　５１　、ＶＥＲＯ及び １ｌｅｌα細胞、並びにチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）ａｔ胞を含有す る。このような細胞の発現ベクターは通常、吐乳類細胞と３ｉｎ性のプロモータ ー及び制御配列、例えばシミアンウィルス４．０　（Ｓ　Ｖ２Ｏ）からの初期及 び後期プロモーター（Ｆｉｅｒｓ等、Ｎａｔｕｒｅ（１９〕８）２７３　：　１ １３）　、又は他のウィルスプロモーター、例えばポリオーマ、アデノウィルス ２、ウシ乳頭腫ウィルスもしくはトリ肉腫ウィルス、あるいは免疫グロブリンプ ロモーター及びヒートショックプロモーターを包含する。＃４乳類細胞宿主系形 質転換の一般的観点は１９８３年８月１６日に発行されなΔｘｅｌの米国特許Ｎ ｏ、　４，３９９，２１６に記載されている。さらに、今や°゛エンハンサー′ °領域発現を最適化するために重要なようであり、これらは一般に、プロモータ ー領域の上流に見出される配列である。必要であれば、ウィルス源から複製開始 点を得ることができる。しかしながら、染色体への組み°込みが真核生物におけ るＤＮＡの複製のための一般的な機構である。今や植物細胞も宿主として利用可 能であり、そして植物細胞と適合性の制御配列、例えばツバリン合成酵素プロモ ーター及びポリアゾニレ−ジョンシグナル配列［Ｄｅｐ　１ｃｋｅｒ　、＾０等 、Ｊ、Ｍｏｌ。

Ａｐｐ、１．Ｇμ＋、（１９８２）　１　：　５６１：］が利用可能である。

Ｃ０２，肚江（貫 使用される宿主細胞に依存して、これらの細胞に適する標準的技法を用いて形質 転換が行われる。Ｃｏｂｅｎ、Ｓ、Ｎ、、Ｐｒｏｃ。

Ｎａｔｌ、＾ｃａｄ、Ｓ恒ユ（ＵＳＡ）　（１９７２）６９　：　２１１０によ り記載されているような、塩化カルシウムを用いるカルシウム処理が原核生物又 は実質的な細胞壁障壁を有する他の細胞゛のために使用される。若干の植物細胞 のためにはアグロバクテリウム・チュメファジエンス（へＨｒｏｂａｃｔｅｒｉ ｕ＋ｎ　Ｌｃｏｎｅｆａｃｉｅｎｓ）　［Ｓｈａｗ、Ｃ，Ｈ，等、Ｇｅｎｅ（１ ９８３）　２３　：　３１５）による感染が用いられる。このような細胞壁を有 しない哺乳類細胞についてはＧｒａｈａ＋ｎ及びｖａｎ　ｄｅｒＥｂ、Ｖｉｒｏ ｌｏｇｙ（１９７８）５２　：　５’１６のリン酸カルシウム沈澱法が好ましい 。酵母への形質転換は、Ｖａｎ　５ｏｌｉｎＨｅｎ、Ｉ’、等、Ｊ、Ｂａｃｔ。

（１９７７）１３０　：　９４６、及びｌ１ｓｉａｏ、Ｃ，Ｌ、笠、Ｉ’ｒｏｃ 、Ｎａｔｌ　、Ａｃａｄ、５ｃｉ−剋Σα（１９７９）７６　：　３８２９の方 法に従って行われる。

Ｃ１３，す＋ンプロットによるｔｎ　ＲＮ　Ａのブロービング：ｃＤＮＡ又はゲ ノムライブラリーのプローブＣ１ｏｎ力１（１９８２）Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ Ｉｌａｒｂｏｒ　Ｐｒｅｓｓ、２０２−２０３頁〕又は１０ｍＭメチル水銀（Ｃ Ｉｌ、ｌ１ｇ０１１）　（Ｂａｉｌｅｙ、Ｊ、Ｍ、等Δｎａｌ　、Ｂｉｏｃｈｅ ｍ。

（１９７６）　７０　：　７５−８５　：及びＳｅｂｇａ　ｌ　、　Ｐ　、Ｂ、 等、ＮａＬｕｒｅ（１９８０）２８８　：　９５−９７）を用いる十分な還元条 件下でのアガロース・スラブ・ゲル電気泳動により、ＲＮ　Ａをナサンプロット のために分画する。メチル水銀ゲルのため、ランニングｒｉｍ液（１１００Ｔｒ Ｉ硼酸、６　ｍ　Ｍ　ＷＡ酸ナトリウム、１０ｍＭ硫酸ナトリウ１１．１＋ｎＭ 　ＥＤＴ＾、ｐＨ８，２）中でアガロースを溶融し、６０℃に冷却し、そして１ 　／１００容量のＩ　Ｍ　ＣＩｈ１１ｇＯＨを添加することにより１．５％ゲル を調製する。ＲＮＡを０．５×ランニング緩衝液に溶解し、そして１０ｍＭメチ ル水銀中で室温にて１０分間インキュベートすることにより変性する。グリセリ ン（２０％）及びブロモフェノールブルー（０，０５％）を加えてサンプルを負 荷する。緩衝液を循環させながら５００〜６００ボルドー、時で電気泳動する。

電気泳動の後、ゲルを　１０ｍＭ２−メルカプトエタノール中で４０分間洗浄し てメチル水銀を脱毒し、そしてＲＮＡをゲルからメンブランフィルタ−に移すこ とによりナサンプロットを調製する。

ｃＤＮＡ及びゲノムライブラリーを、コロニー又はプラークハイブリダイゼーシ ョン法を用いてスクリーニングする。

細菌コロニー又はファージのプラークを２枚のニトロセルロース濾紙（Ｓ＆Ｓタ イプＢ　Ａ　−８５）に上げる。５００ｍＭ　Ｎａ０ＩＩ及び１．５Ｍ　ＮａＣ １で５分間ずつ逐次的に処理することにより、プラーク又はコロニーを溶解し、 そしてフィルターに固体する。

フィルターを、５分間ずつ２回、５Ｘ標準塩クエン酸塩（ＳＳＣ）で洗浄し、そ して空気乾燥し、そして８０℃にて２時間加熱（ｂａｋｅ　）する。

ナサンプロット用ゲル又はｃＤＮＡもしくはゲノムスクリーニング用２枚の濾紙 を、２５〜４２℃にて６〜８時間、フィルター当り１０社のプローブを含まない ＤＮＡハイブリダイゼーション）５１Ｆｆ液（０−５０％ホルムアミド、５〜５ ＸＳＳＣ（ｐ［Ｉ７．　Ｏ＞、５×デンハート溶液（ポリビニルピロリドン＋フ ィコール及びウシ血清アルブミン；　Ｉ　Ｘ　＝０．０２％ずつ）、２０〜５０ ｍＭリン酸ナトリウム緩衝剤（ｐＨ７，０）、０６２％ＳＤＳ、２０μｇ／ｍｊ ２ポリＵ（ｃＤＮＡをプローブする場合）、及び５０μｇ／ｍｌ変性サケ精子Ｄ ＮＡ）とプレハイブリダイズせしめる。次に、キナーゼ処理された（オリゴマー について）プローブを含有するハイブリダイゼーション緩衝液を用いて適当な温 度での約２４〜３６時間のインキュベーションにより、サンプルをハイブリダイ ズせしめる。一層長いｃＤＮＡ又はゲノム断片プローブはニックトランスレーシ ョンにより又はプライマー延長によりラベルされた。

プレハイブリダイゼーション及びハイブリダイゼーションの両者の条件は望まれ るストリンジエンシー（５ｔｒｉｎ８ｅｎｃｙ　）に依存し、そして例えばプロ ーブの長さにより異る。比較的長い（例えば３０〜５０ヌクレオチド以上）プロ ーブのための典型的な条件は４２〜５５℃の温度及び約２０〜５０％のホルムア ミドを含むハイブリダイゼーション緩衝液を用いる。約１５ヌクレオチドのオリ ゴマープローブのために必要とされる一層低温度及び一層低いホルムアミド濃度 （０％〜２０％）を用いる。長いプローブについては、フィルターを例えば３０ 分間ずつ４回、冬場きに４０℃〜５５℃にて２ｘｓｓｃ、０．２％ＳＤＳ及び５ ０ｍＭリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７）により洗浄し、次にｏ、２ｘｓｓｃ及 び０．２％ＳＤＳにより２回洗浄し、空気乾燥し、そして−７０°Ｃにて２〜３ 日間オートラジオグラフ処理する。

洗浄条件は、より短いプローブについては幾分苛酷である。

Ｃ５４，ベク褒？１久泣滅工 所望のコード配列及び制御配列を含有する適当なベクターの造成は、当業界にお いてよく理解されている標準的連結及び制限酵素処理技法を用いる。単離された プラスミド、ＤＮＡ配列、又は合成オリゴヌクレオチドが開裂され、仕立てられ 、そして所望の形に再連結される。

部位特異的ＤＮＡ開裂は、適当な制限酵素（１種類又は複数種類）を用いて当業 界において一般に理解されている条件下で行われ、その詳細はこれらの商業的に 入手可能な制限酵素の製造者により記載されている。例えば、ニューイングラン ドビオラプスの製品カタログを参照のこと。一般に、約１μｇのプラスミド又は ＤＮＡ配列が２０μｌの緩衝液中で１ユニツトの酵素により開裂され、この発明 の例においては典型的にはＤＮＡ基質の完全な消化を保証するために過剰の制限 酵素が使用される。約３７℃における約１〜２時間のインキュベーション時間が 実行可能であるが、変更することも許容される。各インキュベーションの後、フ ェノール／クロロホルムによる抽出により蛋白質を除去し、そしてその後でエチ ドキナーゼを用いて、５０＋ｎＭ　Ｔｒｉｓ（ｐＨ７，６）、１０ｍＭ　ＭｇＣ １ｚ、−チル抽出を行い、そして核酸をエタノールを用いる沈澱により水性画分 から回収する。所望により、標準的技法を用いてポリアクリルアミドゲル又はア ガロースゲル電気泳動により、開裂された断片のサイズ分離を行うことができる 。サイズ分離の一般的記載がＥ比函７吸ｌ江（１９８０）四−：４９９−５６０ に見出される。

制限開裂された断片は、４種類のデオキシヌクレオチドトリホスクェート（ｄＮ ＴＰ）の存在下でＥ、コリＤＮＡポリメラーゼ■の大断片（ＫＩｅｎｏｕ＋　） により、５０　ｍＭ　Ｔｒｉｓ（ｐＨ７，６）、５０ｍＭ　ＮａＣ１，６ｍＭ　 ＭｇＣ１’２．６ｍＭＤＴＴ及び５〜１０μＭｄＮＴＰ　中２０〜２５℃にて約 １５〜２５分間のインキュベーション時間を用いて、平滑末端化することができ る。　ＫＩｅｎｏｕ＋断片は５′接着末端においてフィルインするが、４種類の ｄＮＴＰが存在する場合でも突出３′単鎖をチューバックする。所望により、接 着末端の種類により決定される制限内で唯一の又は選択されなｄＮＴＰを供給す ることにより選択的修復を行うことができる。Ｋｌｅｎｏｗで処理した後、混合 物をフェノール／クロロホルムで抽出し、そしてエタノール沈澱を行う。

Ｓ１ヌクレアーゼによる適当な条件下での処理が単鎖部分の加水分解をもたらす 。

合成オリゴヌクレオチドはＭａｔｔｅｕｃｃｉ等（Ｊ、八ｍ、Ｃｈｅｍ、Ｓｃｃ 　。

（１９８１）川：　３１８５−３１９１）のトリエステル法により、又は自動合 成法を用いて調製することができる。アニーリングに先立つ、又はラベル化のた めの単鎖のキナーゼ処理は、過剰の、例えば１　ｎｍｏｌの基質に対して約１０ ユニツトのポリヌクレオＣ９５，込辻Ｎ酪歿グ交匹 ５ｍＭジチオスレイトール、１〜２ｍＭ　ＡＴＰの存在下で達成される。キナー ゼ処理がプローブのラベル化のためのものであれば、ＡＴＰ高比活性３２γＰを 含む。

連結は１５〜３０μ！の容積中で次の標準的条件及び温度のもとに行われる：　 ２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ−Ｃ１（ｐＨ７，５）　、１０ｍＭ　ＭｇＣ１ｚ、１０＋ｎ Ｍ　ＤＴＴ、３３μｇ／ｍｅ　ＢＳＡ、１０ｍＭ　−５０ｍＭ　ＮａＣ１；及び Ｏ”Ｃにて４０　ＡＺＭＡＴＰ、０．０１−０．０２（１１Ｉｅｉｓｓ）ユニ・ ントのＴ４　ＤＮＡリガーゼ（′″接着末端″連結の場合）、又は１４℃にて１ ｍＭ　ＡＴＰ、０．３−０．６　（Ｗｅｉｓｓ　）ユニットのＴ４　ＤＮＡリガ ーゼ（平滑末端連結の場合）。分子間゛接着末端°′連結は、３３〜１００μｓ ／社の合計ＤＮＡ濃度（５〜１１００ｎ合計末端濃度）で通常行われる。分子間 平滑末端連結（通常、１０〜３０倍過剰のリンカ−を用いる）は１μＭの合計末 端濃度において行われる。

パベクター断片′°を用いるベクターの造成において、５′リン酸を除去しそし てベクターの再連結を防止するため、ベクター断片は一般に細菌アルカリホスフ ァターゼ（ＢＡＰ）で処理する。ＢＡＰ消化はｐ１１８にて約１５０＋ａＭのＴ ｒｉｓ中で、Ｎａ”及びＭ　ｇ＋　２の存在下でベクターμｇ当り約１ユニツト のＢＡＰを用いて６０°Ｃにて約１時間行われる。核酸断片を回収するため、調 製物をフェノール／クロロホルムで抽出し、そしてエタノール沈澱を行う。別の 方法として、不所望の断片の追加の制限酵素消化により二重消化されたベクター において再連結を防止することができる。

ｃＤＮＡ又はゲノムＤＮＡ由来のベクターの配列の変更を必要とする部分のため 、部位特異的プライマー指令変異誘発を用いる。この技法は当業界において標準 的なものであり、そして所望の変異を代表する限定されたミスマツチを除き変異 誘発されるべき単鎖ファージＤＮＡに相補的なプライマー合成オリゴヌクレオチ ドを用いて行われる。要約すれば、ファージに対して相補的な鎖の合成を指令す るためにプライマーとして合成オリゴヌクレオチドが使用され、そして生ずる２ 本鎖ＤＮＡがファージ支持性宿主微生物に形質転換される。

形質転換された細菌の培養物を上層寒天にプレートし、ファージを担持する単一 細胞からのプラーク形成を可能にする。

理論的には、新しいプラークの５０％が変異形を単鎖として有するファージを含 有し、５０％かもとの配列を含有するであろう。プラークをキナーゼ処理された 合成プライマーと、正確なマツチのハイブリダイゼーションを許容するかもとの 鎖とのミスマツチがハイブリダイゼーションを回避するのに十分な温度において ハイブリダイズせしめる９次に、プローブとハイブリダイズするプラークを拾い 、培養し、そしてＤＮＡを回収する。部位特異的変異法の詳細を特定の例におい て下記する。

Ｃ０６，血腹＠鳴４ 下記の造成において、プラスミド造成のための正しい連結は、まずＥ、コリＭＭ ２９４株又は他の適当な宿主を連結混合転換体は、当業界において理解されてい るように、プラスミド造成の方法に依存して、アンピシリン、テトラサイクリン 又は他の抗生物質に対する耐性により、あるいは他のマーカーを用いて、選択さ れる。次に、形質転換体からのプラスミドが、場会によってはクロラムフェニコ ール増幅（Ｃｌｅｗｅｌ　Ｉ　。

Ｄ、Ｂ、、Ｊ、ＢａｃＬｅｒｉｏしく１９７２）　１１０　：　６６７）の後に 、Ｃ！ｅｗｅｌｌ、Ｄ、Ｉ３゜等、Ｐｒｏｃ、Ｎａｔｌ　、＾ｃａｄ、Ｓｃｉ、 （１９６９）　６２　：　１１５９の方法に従って調製される。単離されたＤＮ Ａは制限処理により分析され、そして／又はＳａｎｇｅｒ　、　Ｆ　、等、Ｐｒ ｏｃ、Ｎａｔｌ、八ｃａｄ、Ｓｃｉ、（ＵＳＡ＞（１９７７）７４　：　５４６ ３により記載されＭｅｓｓｉＢ等ＮｕｃｌｅｉｃΔｃｉｄｓ　Ｒｅｓ、（１９８ １）９　：　３０９によりさらに記載されたジデオキシ法により、又はＭａｘａ ｍ等Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　７（１９８０）　６５　：　４９９の方法により配 列決定される。

Ｃ２７，宿主の例示 この発明でクローニング及び発現において使用される宿主株は次の通りである。

クローニング及び配列決定のため、並びにほとんどの細菌プロモーターの制御の もとての造成物の発現のため、Ｅ、コリ・ゼネディックストックセンターＧＣＳ Ｃ＃　６１３５から得られるＥ、コリＭＭ２９４株を宿主として使用した。ＰＬ ＮＲＢＳプロモーターの制御のもとての発現のため、Ｅ、コリＫ　１２株ＭＣ１ ００Ｏラムダ溶原株、Ｎ、Ｎ、、Ｊ８５７５ｕｓＰ６ｏ、＾ＴＣＣ３９５３１が 使用される。

Ｍ１３ファージ組換体のため、ファージ感染に対して感受性のＥ、コリ株、例え ばＥ、コリＫ　１２株ＤＧ９８が使用される。

ＤＧ９８株は、１９８４年７月１３日にΔＴＣＣに寄託され、そして受託番号３ ９７６８を有する。

哺乳類発現はＣＯ５−７及びＣＶ−ＩＭ胞で行われた。

Ｄ、　ＬＪ この発明の組換Ｃ５Ｆ−１は、類似であるがしかし必ずしも同一ではない一次ア ミノ酸配列を有し、そのすべてがＣＳＦ　−１に特徴的な活性パターンを示すか 又はそのような活性パターンを示すミューティンに特異的に開裂され得る一セッ トのミューティンであると考えることができる・・・すなわち、これらは支配的 に単球に分化するように骨髄細胞を刺激することができ、そして定義の項で前記 したように、天然Ｃ３Ｆ−１に対して生じた抗体及びＣ５Ｆ−１活性と関連する りセプターと免疫反応性である。しかしながら、これらのミューティンの幾つか の具体例が好ましい。

ｍＣ３Ｆ−１について第５図に示す一次配列は要求される活性を有し、そして言 うまでもなく好ましい具体例に属する。さらに、＋ｎＣ５Ｆ−１中の１又は複数 のアミノ酸の欠失又は保存的置換によって配列のある部分が変化しているミュー ティンが好ましい。゛保存的′″アミノ酸置換は、蛋白質の活性特性を変化せし めずそして一般に交換された２つの残基の側鎖の化学的類似性により特徴付けら れるそれを意味する。例えば、酸性残基は他の酸性残基により、塩基性残基は塩 基性残基により、疎水性残基は疎水性残基により、バルキーな残基はバルキーな 残基により、等々で保存的に置き換えられる。要求される類似性の程度は、言う までもなく置換が行われるアミノ酸の臨界性及びその性質に依存する。すなわち 、一般に、システィンのための好ましい置換はセリン及びアラニンであり；アス パラギン酸のためにはグルタミン酸であり；リジン又ζｊアルギニン残基のため にはヒスチジン、ロイシン、イソロイシン又はバリンであり；トリプトファン残 基のなめニハフェニルアラニン又はチロシンであり；等々である。

変化に対して最も耐えられるＣ５Ｆ−１蛋白質の領域は、ヒト及びマウス種間の 既知の低相同性領域（残基１５−２０及び７５−８４）、蛋白質分解的開裂に対 する感受性を提供する績域（残基５１と５２、及び残基１９１−１９３）　、ジ スルフィド結合に関与しないシスティン、又は活性のために絶対的に必須ではな い領域（残基１５８−２２４）である。

従って、ｍｃｓＦ　１の位置１５８及び２２４の間（１５８及び２２４を含む） の１もしくは複数のアミノ酸及び／又はアミノ酸の１もしくは複数の配列の欠失 又は保存的置換により特徴付けられるＣ５Ｆ−１ミユーテインが特に好ましい。

さらに、ｔｎＣ５Ｆ　１の位置５１及び５２、及び／又は位置１９１　、１９２ 及び１９３の１又は複数のアミノ酸の欠失又は保存的置換により特徴付けられる ものが好ましい、これらは見かけ上低い相同様の領域を代表するので、他の好ま しい１セツトの具体例は＋ｎＣ５Ｆ−１の位１１５−２０及び／又は位置７５− ８４における１又は複数のアミノ酸の欠失又は保存的置換により特徴付けられる ものである。

さらに、ジスルフィド結合の形成のために必須でない任意の部位のシスティン残 基の欠失又は保存的置換により特徴付けられるミューティンも好ましい、さらに 、…Ｃ５Ｆ−１の位置５９のチロシン残基の欠失又は置換、特にアスパラギン酸 残基による置換により特徴付けられる蛋白質が好ましい。

Ｅ、ヒトＣ５Ｆ−１のクローニング　び次に、ヒトＣ５Ｆ−１のコード配列を得 、この配列を発現ベクター中に配置し、そして目的蛋白質の発現を得るのに使用 した方法を例示する。

されている標準的方法により部分精製し、そしてセファロースＢカラムに付加さ れたＹＹに１０６と称するネズミＣ５Ｆ−１に対するラットモノクローナル抗体 を用いてアフィニティー精製段階を行った。精製の最終段階に、０．１％ＴＦＡ ／３０％アセトニトリル−〇、１％ＴＦＡ／６０％アセトニトリル緩衝液系中の 逆相１１ＰＬＣであった。

ホルボールミリステートアセテートと共にインキュベートすることにより無血清 生産されたＭＩＡＰａＣａ　ＣＳＦ　−１について、細胞上清をリン酸カルシウ ムゲルクロマトグラフィー（Ｄａｓ（前掲）による〕にかけ、次にレンズ豆レク チンを用いるアフィニティークロマトグラフィー（ＤａｓのＣｏｎ＾アフィニテ ィ一段階に代えて）を行い、そして次にセファロースＢに接合したＹＹＧ１０６ モノクローナル抗体を用いる免疫ファイニティ一段階、及び逆相１１ＰＬｃ　（ 、いずれも上記の通り）にかけた。

均一に精製された尿からの蛋白質及びＮＩΔＰａＣａ蛋白質を自動化シーケンサ −上でのエドマン分解を用いるアミノ酸配列決定にかけた。第３図に示すプロー ブの造成を可能にするのＥ、２．　ヒトゲノム酊舛Ｏ凰設 ヒト蛋白質のＮ−末端配列をコードするように設計されたプローブを用いて、λ ファージ・シャロン４中のＭａｎｉａｔｉｓヒトゲノ１２ライブラリーがら、Ｃ ３Ｆ−１をコードするヒトゲノム配列を得た。ヒト−ゲノムのＨａｅ　ＩＩＩ　 ／　Ａ　Ｉｕ　Ｉ部分消化、ＥｃｏＲｌリンカ−への連結、及びＥｃｏＲＩ消化 されたシャロン４フアージへの前記断片の挿入を用いてライブラリーを造成した 。上記のプローブとのハイブリダイゼーションにより判定された、Ｃ５Ｆ−１配 列を含有しそしてｐＨＣ３Ｆ−１と命名されたシャロンファージが、１９８５年 ４月２日にアメリカン・タイプ・カルチュア・コレクション（ΔＴＣＣ）に寄託 され、そして受託番号４０１７７を有する。このファージのその後の研究の際、 再配置（ｒｅａｒｒａｎｇｅ＋ｎｅｎｔｓ　）及び／又は除去が起こり、そして 正しい配列が維持されなかったことが見出された。従って、同様にしてゲノムラ イブラリーから得られ、そして複製中の安定性が増殖によって確認された他のコ ロニがｐ　ＨＣＳ　Ｆ　ａと命名され、そして１９８５年５月２１日にΔＴＣＣ に寄託され、そして受託番号４０１８５が与えられた。ｐ！ＩＣ５Ｆ　−１ａは １８ｋｂの挿入部を含有し、そしてやはりプローブにハイブリダイズすることが でき、そして下記のようにして配列決定及び追加のプローブ造成のために使用さ れた。もしＣ５Ｆ−１コ一ド配列が完全な形で存在すれば、その存在はＧｌｕｚ ’ｍａｎ、Ｙ、、Ｃｅ１ｌ（１９８１）　２３　：　１７５により記載されてい るようにしてＣＯ５−７細胞中での発現によって証明され得る。試験断片を、Ｓ Ｖ４０の複製開始点を含有するように変形されなｐＢＲ３２２由来のプラスミド （ｐＧＲＩ。

Ｒｉｎｇｏｌｄ、Ｇ、、Ｊ、Ｍｏし人ｐ１．Ｇｅｎｅｔ（１９８２）　１　：　 １６５−１７５）中にクローン化した。生じた高コピー数ベクターをＣＯ５−７ 細胞に形　′質転換し、そしてＣ５Ｆ−１逍伝子の発現を２４　、４８、及び７ ２時間後に、Ｄａｓ（前掲）により記載されたラジオリセスターアッセイ法によ りアッセイする。発現は天然Ｃ５Ｆ−１制御配列の制御のもとにある。この方法 により試験されたｐＨＣ５Ｆ−１ａの約１８ｋｂの挿入部のｔｌｉｎｄｌ）消化 物は発現に失敗し、従ってＨｉｎｄｌｌｌが遺伝子を消化したことが示された。

これは、その後のマツピングにより確認された。

しかしながら、最初の配列決定のなめ、３．９　ｋｂの旧ｎｄｍ断片をｐＨＣ５ Ｆ　−１ａファージから得、そしてＭ１３クローニングベクターにクローン化し た。

ｔ！１ｎｃｌＩ［Ｉ断片は部分的に配列決定され、そしてその結果が第４図中に 推定ペプチド配列と共に示される。これは、第１図に示すようにアミノ酸配列が 決定されているヒトＣ５Ｆ−１蛋白質の部分の正しいコドンを含む。約１４００ ｂｐのイントロンの存在が、得られるアミノ酸配列から推定された。さらに、ア ミノ酸２４−３４をコードするゲノム配列（第４図及び第５図中、上方に線を付 した部分を参照のこと）に基いて、ｃＤＮＡ　ライブラリーのための３２−マー のプローブを調製し、そして下記のように使用した。

さらに詳細には、ゲノムクローンｐＨＣ５Ｆ−１ａを得るため、第３図中に示す オリゴマーの２つの混合物を用いてＭａｎｉａｔｉｓライブラリーをプローブし た。ＥＫ１４及びＥＫ１５を選択した。

但し２、示されている他のオリゴマーも同様に有用である。Ｎ−末端配列のため の ゛十分な長さのパブローブを１６種の３５−マーの混合物として使用した。より 短いオリゴマーＥＫ１５を６４種の１８−マーの混合物として使用した。キナー ゼ処理された両プローブにハイブリダイズするファージを拾い、そしてＥ、コリ ＤＧ９８又は他のコンピテント株の感染により培養した。

ＥＫ１４及びＥＫ１５を用いるブロービングのための特定の条件は次の通りであ る。ＥＫ１４のためには、１１１液は１５％ホルムアミド、６　Ｘ　５ＳＣ（ｐ Ｈ７、Ｏ）、５×デンハート、２０ｍＭリン酸ナトリウム、０．２％ＳＤＳ及び ５０μｇ／ｍｅの変性サケ精子ＤＮＡを含有した。プレハイブリダイゼーション 及びハイブリダイゼーションを４２℃にて行い、そしてフィルターを２ＸＳＳＣ 中で５２℃にて洗浄した。

ＥＫ１５のためには、ハイブリダイゼーション及びプレハイブリダイゼーション のために同様の条件を使用したが、但しホルムアルデヒド濃度を０％とし、洗浄 をわずかに低い温度である４２℃にて行った。

陽性にハイブリダイズするファージｐＨＣ５Ｆ−１ａから単離された約１８ｋｂ のＤＮＡ挿入部をｌ１ｉｎｄｌｌで処理し、そして断片を５ｏｕｔｈｅｒｎの方 法に従うアガロースゲル上での電気泳動にかけた。ゲルをニトロセルロースフィ ルター上にレプリカレ、そしてこのフィルターをＥＫ１４及びＥＫ１５によりさ らにプローブした６両プローブが３．９ｋｂ断片にハイブリダイズした。

陽性断片をゲルから切り出し、溶出し、そしてジデオキシ配列決定のためにｔｌ ｉｎｄＨＩ処理されたＭ　１３　ｍ　ｐ　１９にサブクローン化しな。部分配列 を第４図に示す。下線部はヒトＣ５Ｆ−１のすでに決定されているＮ−末端配列 に正確に対応し、点記量を有する残基はネズミ配列と相同である。

第４図中、精製された蛋白質から決定されたヒト配列から推定される、アミノ酸 ２２及び２３のコドン間の１．４ｋｂイントロン領域は翻訳されないで示されて いる。Ｎ−末端配列の上流の配列は推定上のリーダーを含有し、ｃＤＮＡクロー ン（下記参照のこと）配列決定の予備的な結果により試しに確認された、成熟蛋 白質にすぐ臨接するこのリーダーの部分の翻訳が示される。しかしながら、上流 部分は翻訳して示されていない。これらの部分はｃＤＮＡとの比較によりイント ロンを含むことが確認される。

約１３ｋｂを得るための完全な１８ｋｂ遺伝子の配列決定は、遺伝子が８個のイ ントロンにより分離された９個のエクソンを含有することを示す。成熟蛋白質ｃ ＤＮＡの領域は、下にさらに記載するように、コドン５９を除きゲノム・エクソ ンのコドンに正確に対応する。

ｔ１ｉｎｄＩＩＩ３．９ｋｂ断片をＰｓｔｉで消化して既知のＮ−末端配列及び 約１ｋｂの追加の上流配列を合む１ｋｂＰｓｔ　Ｉ　／　ＰｓＬ　Ｉ断片を生じ させることにより追加のＭ１３サブクローンを得た。

Ｅ　、３．　ヒトＣ５Ｆ−１をコード　るｃＤＮＡヒト膵臓癌膵臓癌セルラ４ツ ＰａＣａ　−２をｍＲＮＡの入手源として使用してプローブの有効性を確認し、 そしてイントロンを含まない形のヒトＣ５Ｆ−１コ一ド配列を含有する。ｃＤＮ Ａライブラリーを形成した。ＭｌΔＰａＣａセルラインは、ネズミＬ−９２９８ ａ　Ｊｌａに比べて約１０倍低いレベルでＣ５Ｉ−１を生産する。

血清不含有培地、すなわちＣ５Ｆ−１を生産しない条件下、で維持されなＭＩＡ ＰａＣａ細胞から負対照ｍ　ＲＮ　Ａを調製した。

Ｃ５Ｆ−１を生産する細胞は、血清の除去の後のＣ５Ｆ−１生産の再誘導により 得られた。１０％のウシ胎児血清を含有するダルベコ改変イーグル培地（ＤＭＥ Ｍ　）を使用してローラーボトル中で細胞をコンフルエンスに増殖せしめ、そし てＣ５ＩＩを２０００〜６０００ユニツト／「ｎ１生産せしめた。細胞培養物を 洗浄し、そして無血清で再インキュベートしてＣ５Ｆ−１の生成を抑制した。負 対照について、１日又は２日後に検出可能なＣＳＦ　−１は生産されなかった。

ホルボールミリステートアセテート（１１００ｎ／社）の添加により再誘導され た細胞を得て、数日後に１０００〜２０００ユニツト／ｍｅの生産を得た。

リボヌクレオシ１乙バナジル複合体（Ｂｅｒｇｅｒ、Ｓ、Ｌ、笠、旺旦−曲山店 墜（１９７９）胆：５１４３）の存在下での０，５％ＮＰ−４０を含有する等張 緩衝液中での細胞の溶解、並びにそれに続くフェノール・クロロポルム抽出、エ タノール沈澱及びオリゴｄＴクロマトグラフィーによりｍ　Ｒ，Ｎ　Ａを単離し 、そして濃縮されたｍＲＮＡ調整物を得な。さらに詳細には、細胞をＰＢＳ（リ ン酸緩衝化塩溶液）中で２回洗浄し、そして１０ｔｎＭのバナジル・アデノシン 複合体（８ｅｒｇｅｒ、Ｓ、Ｌ、等、前掲）を含有するＩ　ＨＢ　（１４０ｔｎ Ｍ　ＮａＣ１，１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ、１．５ｔｎＭ　Ｍｇｅｔ！２、ｐＨ８）中 に再恕濁する。

エチレンオキシドポリマータイプのイオン性浄剤（ＮＰ−４０）を０，５％に加 えて細胞膜（しかし植設ではない）を溶解する。　１０００ｘＨにて１０分間の 遠心により核を除去する。核除去１１　（ｐｏｓｔ−ｎｕｃ　ｆｅａｒ　）の上 清を、２容量のＴＥ　（１０ｔｎＭＴｒｉＳ、１ｍＭエチレンジアミン四酢酸（ ＥＤＴＡ）　、ｐＨ７，５：］飽和フェノール・クロロホルム（１：１）に加え 、そして０．５％ドデシ・ル硫酸ナトリウノ一（ＳＤＳ）及び１０ｍＭ　ＥＤＴ Ａに調整する。

上清を４回再抽出し、そして２，０００ｘＨでの１ｏ分間の遠心により相分画を 行う。サンプルを０．２５Ｍ　ＮａＣ１に調整し、２容量の１００％エタノール を添加しそして一２０℃に貯蔵することによりＲ，Ｎ　Ａを沈澱せしめる。ＲＮ Ａを５，０００％ｇにて３０分間ペレッＩ〜化し、７０％及び１００％のエタノ ールで洗浄し、そして次に乾燥せしめる。オリゴｄＴセルロース［Ａｖｉｖ、Ｊ 、等、Ｐｒｏｃ　、Ｎａｔ　Ｉ　、Δｃａｄ、ｓｃｉ、（１９７２）　６９　： 　１４０８−１４１２：）上でのクロマトグラフィーにより全細胞質ＲＮＡがら ポリアデニル化（ポリＡ”）メツセンジャーＲＮＡ　（ｍＲＮＡ）を得る。ＲＮ ＡをＥ　Ｔ　Ｓ　（１０ｔｎＭ　Ｔｒｉｓ、１　ｔｎＭ　ＥＤＴＡ、ｏ、５％Ｓ ＤＳ、ｐＨ７，５）中に２ｔｏ　Ｈ／　ｔｎ　ｌの濃度で溶解する。この溶液を ６５℃にて５分間加熱し、そして４℃に急速に冷却する。ＲＮ　Ａ溶液を室温に した後、０．４Ｍ　ＮａＣ１に調整し、そしてあらかじめ結合緩衝液（５００＋ ｎ　Ｍ　ＮａＣｊ’、１０ｍＭ　Ｔｒｉｓ、１ｔｎＭ　ＥＤＴＡ、ｐｌ＋７．５ ．０．０５％５ＯＳ）により平衡化したオリゴｄＴセルロースカラノ＼にゆっく りと通過せしめる。流通液をさらに２回カラムに通す。次に、カラムを１０容旦 の結合緩衝液により洗浄する。ポリＡ＋〔ｎＲＮΔをＥＴＳのアリコートにより 溶出し、ＴＥ−飽和フェノール・クロロボルムで１回抽出し、そして０．２Ｍへ のＮａＣｊ２及び２容量の１００％アルコールの添加により沈澱せしめる。ＲＮ Ａを２回再沈澱せしめ、そして乾燥に先立って７０％エタノール中で１回、及び 次に１００％エタノール中で洗浄する。

全ｍ　Ｒ，Ｎ　Ａを、ベックマン５Ｗ４０ローターを用いて２０℃及び２７．Ｏ ＯＯｒｐｍにて１７時間、１０ｂ＋Ｍ　Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７，４）、１ｍ Ｍ　ＥＤＴＡ及び０．５％ＳＤＳ中５〜２０重量％シュークロースグラジェント 遠心にかけた。次に、ｍＲＮＡ画分をエタノール沈澱によりグラジェントから回 収し、そして標準的形質転換アッセイにおいてキセノプス　（７）の卵母細胞に 注射した。ＲＮ　Ａ画分の卵母細胞生成物を骨髄増殖アッセイ〔又は、Ｍｏｏｒ ｅ、Ｒ，Ｎ、等、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、（１９８３）　１３１　：　２３７４、 及びＩ’ｒｙｓｔｏｗｓｋｙ、Ｍ、Ｂ、等、＾＋ｎ、Ｊ、Ｐａｔｈｏ１．（１９ ８４）　１１４　：　１４９の骨髄増殖アッセイ〕においてアッセイし、そして 両分それ自体をゲノム配列の第２エクソン（エクソン■プローブ）中のＤＮＡに 対応する３２−マーのプローブへのドツト・プロット・ハイブリダイゼーション によりアッセイした。（第４図及び第５図中の上方の線はエクソン■プローブを 示す。）これらの結果を第７図に示す。

第７図中Ａの破線はキセノプス　（Ｘｅｎｏμ児）卵母細胞からの上清の骨髄増 殖アッセイにおける反応を示し、第７図中Ｂはドツト・プロットの結果を示す、 最も強くハイブリダイズする画分１１は１８Ｓに相当し、他方最も活性な画分８ 及び９は１４〜１６Ｓに相当する。画分８，９、及び１１を用いて、下記のよう にして濃縮されたｃ　Ｄ　Ｎ　Ａライブラリーを形成した。

（ｍ　ＲＮ　Ａはまた、変性ホルムアルデヒドゲル上で両分し、ニトロセルロー スに移し、そしてエクソン■プローブによりプローブした。ストリンジェントな ハイブリダイゼーション条件下でさえ、１．５ｋｂから４．５ｋｂにわたるサイ ズの幾つかの区別される種が見、出された。Ｃ５Ｆ−１をコードする複数遺伝子 の可能性を除去するため、種々の制限酵素によるゲノムＤＮＡの消化物をサザン プロットにかけ、そしてｐｃＣＳＦ−１７ＤＮＡを用いてプローブした。制限パ ターンはＣ５Ｆ−１をコードする１個のみの遺伝子の存在と一致しな。）プロー ブとハイブリダイズする能力は比較的低いが最高の骨髄増殖活性を有するグラジ ェント画分からのｔｎ　ＲＮ　Ａを、プローブと最も強力にハイブリダイズする 両分（１８Ｓ）と混合した。やはりエクソン■プローブにハイブリダイズする一 層高分子の両分は含めなかった。なぜなら、誘導されていない旧ΔＰ　ａ　Ｃａ 　＃ｊ［ｌ胞からの対応するｒｎＲＮＡもエクソン■プローブにハイブリダイズ したからである。

ｃＤＮＡライブラリーを、全ヒトｍ　ＲＮ　Ａ又は濃縮されたヒトｍ　ＲＮ　Ａ から、２つの方法で調製した。１つの方法はλｇｔックスボード、１９８４．Ｄ 、ＧＩｏｖｅｒ編、によ゛り記載されている。

好ましい方法は、ポリＡテイルのオリゴｄＴプライミング及びＡＭＶ逆転写酵素 を用い、Ｏｋａｙａｍ　、　ＩＩ　、等、Ｍｏ１．Ｃｅ１１．ｌ３ｉｏ１゜（１ ９８３）　３　：　２８０−２８９を用いる。この記載を引用によりこの明ｍ書 に導入する。この方法は、ポリｄＧティリングに比べて高い比率で十分な長さの クローンをもたらし、そして宿主ベクターとして、その分献に記載されておりそ して著者がら容易に入手できる２つのベクターｐｃＤＶ　１　及びｐＬｌの部分 を使用する。得られるベクターは、近位Ｂａｍ１！　ＩびＸｈｏ１制限部位を含 有するベクター断片間に挿入部を含み８このベクターはｐＢＲ３２２複製開始点 、及びＡｍｐ耐性遺伝子、並びにＣＯ５−７細胞中で挿入された配列の発現を行 うベクターの能力をもたらすＳＶ／１０制御要素を含有する。

次に、Ｏｋａ　ｙ　ａ　ｔｏ　ａ及びＢｅｒｇ法により上記の濃縮された８■Δ ＰａＣａ＋ＩＩＲＮ　Ａから得られた３００．０００個のクローンライブラリー を、エクソン■プローブを用いて高ストリンジエンシーの条件下でプローブした 。このプローブにハイブリダイズする１０個のコロニーを拾い、そしてコロニー を精製した。これらのクローンを、ＣＯ５−７細胞での一時的（ｔｒａｎｓｉｅ ｎｔ）発現によりＣ５Ｉ−１コード配列の存在についてアッセイした。ＳＶ４０ プロモーターを含むクローニングベクターは、ＣＯ５−７１１胞の形質転換にお いてそれ自体使用された。

プラスミドＤＮＡを１０個の陽性クローンからＣｓＣＮグラジェエントを用いて 精製し、そしてリン酸カルシウム共沈法の変法〔１’ｆａｎｇ、Δ０Ｍ１等、５ ｃｉｅｎｃｅ（１９８５）　２２８　：　１４９）を用いてＣＯ５−７、ｔ（Ｉ Ｉ胞を形質転換しな。３日間のインキュベーションの後、培養上清をＤａｓ、Ｓ 、に、等、Ｂｌｏｏｄ（１９８１）５８　：　６３０により開示されているのと 実質上同様にして行われるラジオリセプターアッセイに、及びＩ’ｒｙｓｔ、ｏ ｔ＋＋ｓｋｙ、　Ｍ、Ｄ、等、Δｍ’、Ｊ、Ｐａｔｂｏｌ　、（１９８４）１１ ４　：　１４６により開示されているのと実質的に同様にして行われるコロニー 刺激（骨髄増殖）アッセイにかけることにより、Ｃ５Ｆ−１生産をアッセイした 。拾われた１０コロニーの内９個はＣＯ３−７，ｔ（Ｈ胞中での一時的（ｔｒａ ｎｓｉｅｎｔ）ＣＳＦ−１生産を示すことに失敗した。発現を示した１つのコロ ニーを培養し、プラスミドＤＮＡを単離し、そして挿入部を配列決定する。

ＤＮＡ配列を推定されるアミノ酸配列と共に第５図に示す。

十分な長さのｃＤＮＡは１．６４ｋｂであり、そして２２４アミノ酸の成熟Ｃ５ Ｆ−１蛋白質をコードする。このクローンをＣ５Ｆ−１７と称し、このものはシ タス寄託番号ＣＭＣＣ２３４７を有し、そして１９８５年６月１４日に、受託番 号Ｎｏ、５３１４９として、アメリカン・タイブカルチュア・コレクションに寄 託された。Ｃ５Ｆ−１コードＤＮＡを有するプラスミドはｐｃＣＳＦ　１７と命 名された。

Ｅ、４．型読づ」髪１値凱九冴 Ｃ５Ｆ−１７からのプラスミドＤＮＡのＣＯ５−７細胞中での発現を、骨髄増殖 アッセイ、コロニー刺激アッセイ及びラジオリセプターアッセイを用いて確認し そして定゛旦した。Ｃ５Ｆ−１についての骨髄増殖アッセイの特異性は活性を減 少せしめるＣ５Ｆ−１抗血清の能力のみに存すること；コロニー刺激アッセイの それが得られるコロニーの性質に存することが思い出されよう。両アッセイは、 Ｃ５Ｆ−１生産がＩｎ１当り数千ユニットのオーダーであることを示した。

伴筬す性 蛋白質の生物学的活性を測定する骨髄刺激アッセイのため、Ｂａ、Ｉｂ／ｃマウ スからの骨髄細胞を７２時間上清の逐次稀釈物て、ラベルされたチミジンの取り 込みにより測定した。誘導されたＭＩＡＰｃＣａ細胞からの培地を対照として使 用しな。Ｃ５Ｆ−１の特異性を、チミジンの取り込みを抑制する、人尿Ｃ５Ｆ− １に対するラビット抗血清の能力により確認した。ｐｃＣＳＦ−１７によりトラ ンスフェクトされたＣＯ５−７細胞の上清の１：１６稀釈における結果を第１表 に示す。

第１表 ３Ｈ−ミシンの取り込み 培地　８６１　７８６　２６８２ ＭＩＡＰａＣａ上清　１２２５５　１６４９８　３３０２μｓ辷−１’ｊｌ注　 坏甜臣　２１９９６　−ζ移４（抗ヒトＣ５Ｆ−１血清はＤａｓ等、前掲の方法 によりＩＡＩ製された。） ＭｌＡＰａＣａ上清（上に用いられた１：１．６稀釈における）は１．２５Ｕ／ ｍｌのＣＳＦ活性を含有し、これは未稀釈の上清中２０００Ｕ／ｌｎｌに相当し た。ここで、コロニー刺激活性の１ユニツトは、５ｔａｎｌｅｙＪ、Ｒ，等、Ｊ 、Ｌａｂ、ＣＩ　ｉｎ、Ｍｅｄ　（１９７２）７９　：　６５７のアッセイにお いて、１０’／＋ｏＮの骨髄細胞から１個のコロニーを生じさせるのに必要な旦 として定義される。

チミジンの取り込みが抗−ＣＳＦ−１血清により阻害されるから、これらのデー タは骨髄刺激活性がＣ５Ｆ−１と関連していることを示している。１：８〜１： ６４の４つの稀釈において得られたこの骨髄増殖アッセイにおける結果の回帰は Ｃ５Ｆ−１７上清中のＣ５Ｆ−１の２３５８Ｕ／ｍ１の予想活性を示し、これは 抗血清の存在下で４２４Ｕ／ｍ（ｌに減少したが、非−免疫血清の存在下で３６ ９３Ｕ／ｍｆｆ１への見かけの増加を示した。これは下記のラジオリセプターア ッセイにおいて示されたレベルに匹敵コロニー刺激についてのＣ５Ｆ−１７上清 の直接アッセイ（５ｔａｎｌｅｙ、Ｅ、Ｒ，等、Ｊ、Ｌａｂ、ＣＩ　ｉｎ、Ｍｅ ｄ、前掲）は４２８７Ｕ／ｌａｎを示し、これは非−免疫血清の存在により実質 的に影響を受けなかったが、ラビット抗ヒトＣ５Ｆ−１の存在下でＯＵ／ｍｌに 低下した。ｐｃＣＳＦ−１７によりトランスフェクトされたＣＯＳ　−７の上清 により誘導されたコロニーの８５％が単核形悪を有し、Ｍｌ＾ＰａＣａ上清によ り誘導されたコロニーは９４％のマクロファージ−６％の顆粒球の比率を示した 。

ラジオリセブターアッセイ ラジオリセプターアッセイは、Ｊ７７４．２マウスのマクロファージ細胞上の特 異的リセプターに対する１２５Ｉ−ラベル化Ｃ５Ｆ−１と試験化合物との間の競 争を測定する。上記のようにしてコロニー刺激活性についてアッセイされたＭＩ ＾ＰａＣａ上清を標準（２０００Ｕ　／　ｍｊ２　）として用いた。ｐｃＣＳＦ −１７でトランスフェクトされたＣＯ５−７の上滑のＣ５Ｆ−１濃度は、１：１ ０稀釈に基いて２４７０Ｕ／ｍｌであり、そして１：５稀釈に基いて３２３９Ｕ ／ｍｌであることが見出された。

すなわち、ｐｃＣＳＦ−１７によりトランスフェクトされたＣＯ３−７細胞の培 地中のＣ５ＩＩ濃度について、すべてのアッセイにおいて匹敵する値が見出され た。

Ｅ、５　工阻二し＠交定ｒ九災 ＣＯ５−７系は、ベクター配列の複製及び該配列がらの発現を許容することによ り組換Ｃ５Ｆ−１をもたらす。

ヒトＣ５Ｆ−１配列はまな原核系又は真核系において安定に発現され得る。一般 に、原核宿主は生産の容易さをもたらし、他方真核細胞は天然シグナル配列の使 用を許容しそして所望の翻訳後プロセシングを行う。これはＣ５Ｆ−１の場合に 特に重要である。なぜなら、この天然蛋白質はダイマーだからである。細菌はＣ ５Ｆ−１をモノマーとして生産し、そしてこのモノマーは抽出後にダイマー北条 ｒトにかけられるであろう。

仄遺１ル刑 原核性発現のため、ｃＤＮＡ　クローン、又は例えば部位特異的変異誘発により イントロンが切り取られたゲノム配列を変形してＡＴＧ開始コドンをＮ−末端の グルタミン酸のすぐ上流に置き、そしてこのＡＴＧのすぐ上流に旧ｎｄｌＩ［部 位を置くことにより下記の標準的宿主発現ベクターへの挿入のために便利な部位 を設ける。これは、天然リーダー配列及びＮ−末端コード配列を両端に有する目 的のＡＡ（：ＣＴＴＡＴＧに相補的な新たな配列を含有する合成オリゴマーによ る挿入部位特異的変異誘発を用いて直接的に行うことができる。

Ｏｋａｙａｍａおよび８ｅｒＢの方法を用いて得られたｃＤＮＡ　について、完 全なコード配列を含有するＤＮＡ断片をｐｃＣＳＦ−１７から、Ｘｈｏ（による 消化によって切り出しく宿主クローニングベクターから保持されている部位にお いて）、アガロース変異誘発を行うため、宿主バクテリオファージＭ　１３ｍｐ １８Ｄ　ＮＡも５ａｌＩにより処理し、そして精製された断片と標準的条件下で 連結し、そして凍結処理されたコンピテントＥ、コリＩり１２株ＤＧ９８にトラ ンスフェクトする。細胞を、シグマ社（セントルイス、ＭＯ）から得られるイソ プロピルチオガラクトシド（ＩＰＴＧ）　５　Ｘ　１０−’Ｍ及びＸ−ｇａ１４ ０　μｇ／ｒｎｌを含有する培地上にプレートする。非補完白色プラークを新し い培地に拾う。ミニーカルチュアを予想サイズの組換単鎖ファージＤＮＡについ てスクリーニングし、そして目的の組換ファージの培養物を制限分析を用いて確 認する。

Ｃ５Ｆ−１配列のＮ−末端コード部分及びリーダーコード部分と相補的であるが しがし目的のＡＡＧＣＴＴＡＴＧ配列に対する相補体を含有する３４−マーを合 成し、ぞしてＣ，／１に記載の方法に従って精製する。この３４−マー調製物の 部分を、Ｃ，４に前記したＭａｘａｍ及びＧ１１ｂｅｒｔ　（Ｍａｘａｍ、＾２ 等、Ｍｅｔｂｏｄｓ　１ｎｂ−岨顯扱旺（１９８０）　６８　：　５２１　、ア カデミツクプレス〕の技法の変法に従って放射性ラベルする。

変異を行うため、上に調製された組換バクテリオファージをＥ、コリ１２株ＤＧ ９８中に調製し、そして単鎖ファージＤＮＡを精製する。１ｐ＋ｎｏｌｅの単鎖 ファージＤＮＡ及び１０ｐｍｏｌｅの上記合成ヌクレオチドブライマー（キナー ゼ処理さ２０　ｍＭ　ＨｇＣｌ２．１００＋ｎＭ　ＮａＣＮ、２０ｍＭ２−メル カプトエフノール中で６７℃にて１分間そして次に３７℃にて３０分間加熱する ことによりアニールする。アニールされたＤＮＡをＤＮＡポリメラーゼＩ　（Ｋ ｌｅｎｏｗ）及び５００μＭ　ｄＮＴＰと共に０℃にて３０分間インキュベート し、そして次に３７℃にする。アリコート（０，０５又は０．２５ｐｍｏｌｅ） を５分、２０分、及び４５分後に取り出し、Ｅ、コリＫ　１２株ＤＧ９８に形質 転換し、そしてプレートする。

増殖の後、プレートを４℃に冷却し、そしてプラークをＢｉｏｄｙｎｅから得ら れるＰａ１ｌ膜又はＳ＆Ｓフィルターにより取り上げる（第１のフィルターにお いては１〜２分間、第２のフィルターのなめには１０分間以上）。フィルターを ２．５Ｍ　ＮａＣ１，０，５Ｍ　ＮａＯＨ中で変性する（　分間）。変性媒体を ３Ｍ酢酸ナトリウムによりｐＨ５，５に、又はＩ　Ｍ　ＮａＣ１を含有するＩ　 Ｍ　Ｔｒｉｓ−Ｃ１（ｐＨ７，５）により中和し、フィルターを真空中８０℃に て１時間加熱（ｂａｋｅ）Ｌ、そして次に高ストリンジエンシーにおいてプレハ イブリダイズせしめる。次に、フィルターを上記調製されたキナーゼ処理された 合成３４−マーによりプローブし、洗浄し、そして−７０℃にて一夜オートラジ オグラフ処理する。

所望の変異したファージのＲＦ形をＥｃｏＲＩで処理し、Ｋｌｅｎｏｕ＋で平滑 末端化し、そして次にｌ１ｉｎｄｌで消化して遺伝子を旧ｎｄ■／平滑断片とし て切り出す。（全く類似の方法で、ｐＭｃｓＦがらのＣ５Ｐ−１コ一ド配列を得 、そして変形することができる。）次に、ヒト（又はネズミ）ＣＳＦ−１コ一ド 配列を含有するこの断片をｔｌｉｎｄｌｌＩ　／　１３ａｍＨＩ　（平滑）消化 されたｐＰＬＯＩ’又はｐＴＲ［’３（下記参照のこと）と連結して、ＡＴＧ開 始コドンをモーターのすぐ下流に置く。これらの得られたプラスミドをＥ、コリ Ｍ　Ｃ１０００ラムダ溶原株又はＭＭ２９４に形質転換し、そして次にそのプロ モーターに適する手段により誘導する。

細胞を遠心により収得し、高波処理し、そして遊離したＣ５Ｆ−１を可溶化する 。ヒト（又はネズミ）ＣＳＦ−１の存在は、音波処理物を前記のコロニー刺激ア ッセイにかけることにより確認される。

皿匹 ＳＶ４０プロモーターの制御のもとにヒトＣ５Ｆ−１をコードするｃＤＮＡを　 含有するＯｋａｙａｍａ　−１３ｅｒｇプラスミドｐｃＣＳＦ−１７はまた、前 記ＣＯ５−７セルラインがそれから誘導された親セルラインであるモンキーＣＶ −１ｍ胞での安定な発現を行うために使用され得る。宿主モンキーＣＶ−１＃ｊ Ｈ胞をコンフルエンスに増殖せしめ、そして次に５００，０００ＩＩＩＩ胞当り １０μｇのｐｃｃｓＦ−１７及び種々の旦（１，２，５，及び１０μｇ）のｐＲ ＳＶ　−ＮＨＯ２ＣＧｏｒｍａｎ　、　Ｃ，等、５ｃｉｅｎｃｅ　（１９８３） ２２１　：　５５１−５５３）を用いて同時形質転換した。形賞転換体を、１０ ０μｇ／ｍｌのＧ４１８抗生物質（ｐＲＳＶ　−ＮＥＯ２プラスミドがこれに対 する耐性を付与する）を含有する１０％ＦＢＳを伴うＤＭＥＭ培地中で増殖せし 、めな、ＣＶ−１セルラインは１Ｑ−５１２コロニ一／１０６細胞／μｇＤＮＡ の０４１８形質転換頻度を示した。

ＣＶ−１＃［ｌ！胞を上記のようにして同時形質転換し、そしてＧ４１８含有培 地中で選択した。耐性コロニーをＧ４１８不含有培地中で増殖せしめそして次に Ｇ４１８含有培地に戻すことによりＧ４１８耐性表現型の安定性について試験し た。抗生物質含有培地に戻された際のこれらの培養物の生存能力が、ｐＲｓＶ− ＮＥＯＺＤＮ八が細胞ゲノノ、に永久的に組み込まれたことを示唆する。マーカ ープラスミドにより安定に形質転換された細胞は、約５０％の確率で同時トラン スフェクトプラスミドのＤＮＡをま■み込んでいるから、これらの細胞の約半数 はさらにそれらの染色体ＤＮＡ中にｐｃＣＳＦ　−１，７ＤＮＡを含有するであ ろう。

上記のように安定に形１丁転換されたことが証明されたＣＶＩＪ胞のＧ４１８耐 性プールの幾つかのクローンを拾い、そして２個のフラスコ中でコンフルエンス 近くまで増殖せしめた。各２個の内の１つのフラスコに５Ｖ−４０ウイルスを５ のいるＣ５Ｆ−１のアッセイのため、感染後６日日に培地を収得した。イムノア ッセイは、精製された人尿Ｃ５Ｆ−１に対して生じた“ラビット５２″ポリクロ ーナル抗血清に対する１２５■−ラベル化ＭＩＡＰｃＣａ　ＣＳＦ　−１との競 争に基く。

選択されなＣＶ−１クローンの１つはこのアッセイに従ってＺ３３５Ｕ／ｍ（ｌ のＣ５Ｆ−１の生産を示し、他方５Ｖ−４０により感染されていない細胞は２Ｏ Ｕ／ｍＮ未満を示した。１０μｇのｐｃＣＳＦ−１７により形質転換されたＣＯ ５−７細胞を用いる対照は、ＳＶ−／１０の感染を伴わないで２４０ＯＵ／ｍｌ のＣ５Ｆ−１，の生産を示した。

Ｃ５Ｆ−１生産性ＣＶ−１セルラインはそのゲノムに安定に４０による感染の後 のＣ５ＩＩの安定な生産のために使用することができる。感染はゲノノ、からｐ ｃｃｓＦ−１７ＤＮＡを“救出パ（ｒｅｓｕｃｕｅ　）　Ｌ、そして救出された ＤＮＡの複製に必要な５Ｖ−４０Ｔ−抗原を提供すると予想される。５Ｖ−４０ 感染がなければ、組込まれたｐｃＣＳＦ　−１７ＤＮＡは効果的に発現されない 。

ＣＶ　−１（ＣＳＦ−１７）セルラインによるＣ５Ｆ−１コ一ド配列の発現の最 適化は、１以上の感染多重度及び１０％ＦＢＳ培地を用いるＶＳ−４０感染の６ 日後のラジオイムノアッセイにより測定した場き６５００〜８０００Ｕ／ｍｅを 示した。１０の多重度における発現の研究は匹敵する生産を示したが、しかし生 産は感染後２日目に培地からＦＢＳを除去した後減少した。

他の方法として、適当な制御系及び真核細胞における発現を許容する宿主ベクタ ーを、Ｃ５Ｉ−１コ一ド挿入部を受理するなめに用いることができる。例えば、 同じ承継人に承継され１９８２年１１月１日に出願された米国出願Ｎｏ、４３８ ，９９１に記載されているように、ＣＨＯａｌ胞及び適当なベクターを使用する ことができる。前記特許出願の記載を引用によりこの明細書に組み入れる。

Ｅ、６　Ｃ５Ｆ−１の活性 Ｃ５Ｆ−１の活性の追加の定義が、ＣＶ−１により生産される組換材料のモデル として、部分精製されたＭＩΔＰａＣａＣ５Ｆ　−１又はネズミＬ細胞Ｃ５Ｆ− １を用いて与えられた。Ｃ５Ｆ−１は、誘導されたヒト単球によるインターフェ ロン及び腫瘍壊死因子の生産を１０倍まで増強せしめることが示された。ＣＳＦ 　−１はまた、マクロファージ抗腫瘍毒性を刺激することが示された。

ヒト単球によるＴＮＦ生産の刺激 ８■＾ＰａＣａＣ５Ｆ　１を上清からリン酸カルシウムゲル濾過及びレンズ豆し クチンクマトグラフィーにより精製した。リンホカイン生産のアッセイのため、 末梢血−付着細胞を１０７細胞ずつ収容する２木のフラスコ中でインキュベート した。１つのフラスコは上記のように精製された１００ＯＵ／ｍｌのＣＳＦ　− １により処理した。３日後、細胞を収得し、そして洗浄し、そして５　Ｘ　１０ 　’／ｍｌの細胞濃度で再懸濁し、そして２４−ウェルプレートに０．５ｍｌ／ ウェルでプレートした。ウェルを１０　μｇ／　＋ｎｊ２のＬＰＳ及び２０Ｂ／ ｍｌのＰＭＡで４８時間処理し、そして上清をＴＮＦアッセイのために収得した 。Ｃ８Ｆで処理された細胞は、未処理細胞に比べて約９倍多くのＴＮＦの分泌を 示した（１６２Ｕ／ｍｌに対して１５００　Ｕ　／　ｍｅ　）。

ヒト単球によるインターフェロン生産の刺激インターフェロン生産に対するＣ５ Ｆ−１の効果を実験するための類似の実験において、末梢血付着細胞を３日間１ ０００Ｕ／社のＣ５Ｆ−１の存在下及び非存在下で前記のようにしてインキュベ ートし、収得し、５ＸＩＱｓ／ｍｌで再懸濁し、そして上記のようにして２５− ウェルプレート中にプレートした。

種々の量のポリＩＣを加えることにより細胞をインターフェロン生産のためにイ ンキュベートした。上清を、■ＳＶに感染されたＧ　Ｍ　２５０４細胞に対する それらの細胞変性効果によりインターフェロン生産についてアッセイした。Ｃ５ Ｆ−１で刺激された細胞は、ＭｃＣｏｒｍｉｃｋ、Ｆ、笠、Ｍｏ１．Ｃｅ１ｌ　 １３ｉｏ１．　（１９８４）４　：　１６６により記載、されているようにして ５０μｇ／ｍｌのポリＩＣにより誘導された場合、１００Ｕ／ｍＮの生産を示し 、他方同様に誘導された未処理細胞は３ｔＪ／社未満生産した。

ヒト単球による骨髄Ｃ３Ｆ生産の刺 単球を士Ｃ５Ｆ−１にて３日間インキュベートし、そして第１表におけるごとく 骨髄Ｃ８Ｆの生産のために誘導しな。示されて−いる３つの代表的な実験は異る 提供者からの血液を用骨髄ＣＳ　Ｆ　（Ｕ／ｍｆｌ） 実験１　実験２　実＠３ 誘導　二ｌ汁−±担汁−二旦針一　土遵廷一式ＳＦ　＋左廷−培　地　ｏｏｏｏ ｏ。

０．１μｇ／＋０１　−　−　０　０　０　８０±１７ＬＩ’Ｓ １μｇ／−〇７００±７２４０±２０　２００±２０　１０３±１２　３７７± ５７ＰＳ ＰＭＡ ＰＭＡ ２Ｂ／ｍｌ−３７０±１７　２９７±６１８３±１５　３８０±５２　７１６） ７６ＰＭΔ ネズミマクロファージによる”＞Ｉ［［Ｉｎ　ｆｒ、’６ｃｖＭＩｍ　；他のコ ロニー刺激因子との比較 マクロファージ刺激をアッセイするために、Ｌ−細胞条件化培地から得られたネ ズミＣ５Ｆ−１を、肉腫標的を殺すネズミマクロファージの能力の刺激を示すア ッセイにおいて、ｐｃｃｓＦ　１７から組換生産されたＣ５Ｉ−１のためのモデ ルとして使用した。このアッセイにおいて、正常２時間付着Ｃ３Ｈ／１ｌｅＮマ ウス末梢マクロファージをインビＩ・口で１日間ＣＳＦ　−１を伴って又は伴わ ないでインキュベートし、そして次に２０：１の比率で３■−チミジン−ラベル 化マウス肉腫ＴＵ５細胞及びＩＯＶ／Ｖ％ｃｏｎＡ−誘導（１０■ｇ／＋ｎｆ） 肺臓リンホカイン（Ｌｌ（）（ガンマ−インターフェロンを含有する）と混合し た。その後の４８時間にわたるラベル化チミジンの放出をＰ＆ｆ５細胞死滅の測 定として用いた。１２００Ｕ／ｍｌのＣＳＦ死　滅　増、　加 Ｃ５Ｆ−１＋ＬＫ　４９　２Ｇ ＣＳ、Ｆ−Ｉ　ＬＫ　５１　３１ ＣＳＦ−Ｉ　Ｃ５Ｆ−１＋ＬＫ　６０　５４ＣＳＦ−１）ＬＫ　４７　３４ ＣＳＦ−１７ ＣＳＦ−Ｉ　ＬＫ　４９　４０ ＣＳＦ−Ｉ　Ｃ５Ｆ−１＋ＬＫ　６９　９７標的細胞を殺す能力の上昇は、Ｃ５ Ｉ−１が増殖の予備的１日の間に添加された場き又はインキュベーションの間に 添加された場りに認められた。しがしなからＣ３Ｉ−１がこれらの雨期間中に存 在した場合に最も劇的な効果が観察された。

単球及びマクロファージの刺激の原因としての細菌リポポリサッカライド（ＬＰ Ｓ）の汚染の可能性は排除された。すなわち、ｊ占用されたＣＳＩ’−１のＬＰ Ｓ含量は低く〔リムルス（Ｌｉｍｕｌｕｓ）アメーバ細胞リセートアッセイによ り、＜　０　、３　ｎｇ／３０００Ｕ　Ｃ５Ｆ７’ｌ　）　：抗−ＣＳＩＩ　カ ラムへの適用により活性が除去され；　Ｃ３１１／　ＩＩ　ｅ　Ｊマウスがらの マクロファージはＣ５Ｆ−１に反応するがしかしＬＰＳには反応しない。

５μｇのＬＰＳの■投与後５時間に得られた６個のマウスの肺からＣＳＦ　−Ｇ Ｍを調製した。肺を細断し、そして血清不含有培地中で３日間インキュベートし 、そして上清をＹＹＧ１０６アフイニテイーカラムを用いてＣ５Ｆ−１デブレー シヨン（ｄｅｐｌｅｔｅ）Ｌな（ＣＳＦ−１含量が２７０　Ｕ　／　ｍｌがら７ ８Ｕ／ｍｌに減少、　した）。ＣＳＦ　−にを、同様に処理したＬＤＩ血清不含 有ｉ地がら調製した。ＣＳＦ　−ＧＭ及びＣ５Ｆ−Ｇ含量を２００００　／　ｍ ｌニテ：７０ニー刺激アツセイによりアッセイしな。

末梢血マクロファージを４０％の前記培地又はアッセイされたし一細胞培地のい ずれかと共に２０００Ｕ／ｍｌにて１日間インキュベートし、そして次に追加の 培地と共に又はＬＫと共に４８時間インキュベートし、そして上記のようにして ＴＵ５の死滅についてアッセイした。

結果を第６図に示す。Ｃ５Ｆ−１はＴＵ５に対する毒性の顕著な増強を示したが 、Ｃ５Ｆ−Ｇ及びＣＳＦ　−ＧＭはいずれもなんらの効果も有しなかった。

序、久ミ抗ウィルス活性の刺激 付着ネズミチオグリコレート誘導マクロファージをＣＳＦ　−１と共に３日間イ ンキュベートし、そしてＶＳＶにより一夜怒染せしめた。インターフェロンのＬ ＰＳ誘導をブロックするなめポリミキシンＢを試験サンプルに加えた。次の表は 付着したままの細胞のクリスタルバイオレット染色を示す。

クリスタルバイオレット 処　理　−ポリミキシンＢ　＋ポリミキシンＢ培地／ＶＳＶなし　０．１５８＋ 　０．０１９培地−１−ＶＳＶ　０．０５８３＋０．０２　０．０４９＋０．０ ０９ＣＳＦ−１６２５Ｕ／＋ａＺ＋ＶＳＶ　０．１３９＋０．０１８　０．１７ ７＋０．０４１２５０＋ＶＳＶ　Ｏ，１６７＋０．０６　０．２０５：！＝０． ０７２５００＋ＶＳＶ　Ｏ，１６０＋０．０６　０．２１９±０．０４５０００ ＋　Ｖ　Ｓ　Ｖ　Ｏ，１５０±０．０３　０．２０２±０．０６従って、Ｃ５Ｆ −１処理細胞はＶＳＶに対するマクロファージの保護を示した。

Ｅ、７．−μｓ旦ニュ！ｌ史剋北工 組換生産されたヒトＣ５Ｆ−１を標準的製薬手順を用いて投与のために製剤化す ることができる０通常、Ｃ５Ｆ−１は注射用の形で調製され、そして唯一の活性 成分として、あるいは他の蛋白質又は補完的であるか類似する活性を有する他の 化６物との組合わせにおいて使用されるであろう。このような他の化合物には、 代替可能な抗腫瘍剤、例えばアドリアマイシン、又はリンホカイン、例えばＩＬ −１，−２，及び−３、α−２β、及びγ−インターフェロン、及び腫瘍壊死因 子が包含されよう、Ｃ５Ｆ−１活性成分の効果はこのような追加の成分の存在に よって増強又は改良されよう。上記のように、Ｃ５Ｆ−１は有利な態様で適切な 血球と相互作用することができ、そしてそれ故にこの発明の組成物は、場きによ っては追加のリンホカインの存在下でのこのような細胞とＣ５Ｆ−１とのインキ ュベーション混合物を包含することかで゛きる。このようなインキュページジン 混り物の」１清両分、又は細胞も含有する全混合物を使用することができる。

Ｆ、ネズミＣ５Ｆ−ユ ネズミＣ５Ｆ−１をコードするイントロン不合ＤＮＡ配列を、多量のＣ５Ｆ−１ を生産するネズミ線維芽細胞セルラインを用いて［する。ｃＤＮＡライブラリー を形成するためのｍ　ＲＮ　Ａ源として、ΔＴＣＣから入手可能なＬ−９２９ラ イン含用いる。既知のネズミＮ−末端及びＣＮＢｒ−開裂内部ペプチド配列に基 いて造成されたオリゴヌクレオチドプローブを用いてこのｃＤＮＡ　ライブラリ ーをプローブすることにより、ネズミ型蛋白質のための完全コード配列を回収す る。Ｎ−末端配列の相同性、ヒト及びネズミの両者のＣ３Ｆ−１調製物の骨髄細 胞からのマクロファージコロニーを刺激する能力、並びにラジオレセプター及び ラジオイムノアッセイ（Ｄａｓ、Ｓ、Ｋ。

等、…ｏｄ　（１９８１）　５８　：　６３０　）に関する限定された交差反応 性に基き、ネズミＣ５Ｆ−１はヒト物質におよそ８０％相同であると信じられる 。

Ｆ、１．１質の積設 ネズミＣ５Ｆ−１を、５ｔａｎｌｅｙ、Ｅ、Ｒ，等、ムハシｎｏ１．阿ｅＬｈ。

（１９８１’）　４２　：　２５３−２８５、及びＷａｎｇ、Ｆ、Ｆ、等、にＣ ｅ１１．ｌ１ｉｏｃｈｅ＋ｎ。

（１９８３）２１　：　２６３−２７５により開示された方法、あるいはＩＩ　 ｕ　ｎ　−いるＳＤＳゲル電気泳動法に従って精製した。

位置１０におけるシアノゲンブロマイド開裂を用いて分解法を延長することによ り、ネズミ配列のアミノ酸１−３９を得な。マウス蛋白質からの内部開裂断片も 得、そして配列決定しな。

マウス蛋白質の全体組成データも下記のように得た。これらのデータは、良好な 回収を示すアミノ酸について正しい相対モル％を示す。しかしながら、ヒスチジ ン及びシスティンは良好な収率で回収されなかったので数値は絶対的ではない。

アミノ酸　モル％　残基／１２５ 八ｓｐ　２０．１　２５．１ Ｇｌｕ　２０．０　２５．０ 旧５ Ｓｅｒ　６．０　７．５ Ｔｈｒ　５．９　７．４ Ｇｌｙ　５．４　６．８ 八Ｉａ　６．８　８．５ へｒｇ　３．０　３．８ ｒ’ｒｏ　６．７　８．４ Ｖａｌ　５．３　６．６ Ｎｅｔ　１．１　１．４ １１ｅ　３．９　４．９ Ｌｅｕ　８．５　１０．６ Ｐｂｅ　６．０　７．５ Ｌｙｓ　３．５　４．４ 残基／ＩＺ５への換算は分子量からの配列長さの概算に基く。

Ｆ、２．ネズミＣ５Ｆ−１ｃＤＮＡの調製ネズミＣ５Ｆ−１のアミノ酸配列５− １３及び内部配列をプロブ造成の基礎として使用した。

ネズミ配列に対応する３セツトのオリゴマーを調製した。節回に示すように、１ つの配列は“′領域Ａ　”−すなわちアミノ酸９−１３をコードするように調製 され：他方は“領域Ｂ”−すなちアミノ酸５−９をコードするように調製され； 第３は内部配列゛領域Ｃ″の位置０−６をコードするように調製された。

コドンの冗長性のため、オリゴマーのこれらのクラスのそれぞれは高度に縮重性 （ｄｅｇｅｎｅｒａｔｅ　）である。

すなわち、領域Ａに基いて造成された１５−マーは４８を数え；領域Ｂ（ヒスチ ジンのコドンの最後のヌクレオチドを欠く）に基いて造成された１４−マーもや はり４８を数え；領域Ｃに基いて造成された２０−マーは３２を数える。これと は異り、領域Ａをコードするように造成された１５−マーは１５個の位置の内の ４個にミスマツチを有することができ、領域Ｂに関して造成された特定の１４− マーは６個の位置にミスマツチを有することができ；領域Ｃ゛に関して造成され た特定の２０−マーは５個の位置にミスマツチを有することができる。

下に記載するように、適切な方法設計により、所望の濃縮されたネズミｃＤＮＡ 　ライブラリーの形成のために濃縮されたメツセンジャーＲＮＡ画分を見出すこ とができ、そしてプローブとして使用するための精密に正しいオリゴマーも確認 される。

ネズミＬ−９２９細胞から全メツセンジャーＲＮＡを抽出しそして精製する。ネ ズミＬ−９２９細胞をＤＭＥ培地上で８日間培養し、そして次に遠心により収得 する。全細胞質リボ核ｉ！ｉ１２　（ＲＮＡ　）を、ＭＩＡＰａＣａ　ｍＲＮＡ について上記したのと同じ方法により細胞から単離した。

ｍ　ＲＮ　Ａ　を、Ｃ，３項に記載したようにナサンプロットのためにゲル上で 両分する。領域Ａに対応する１５−マー配列を１２ずつの４群にわける。これら の群のそれぞれを、対照及びネズミＬ　−９２９１１１ＲＮ　Ａスラブに低スト リシジェンシーのちとにハイブリダイズせしめるために用い、そして生ずるパタ ーンをラジオオートグラフィーにより観察した。使用し・た低ストリンジエンシ ー条件のもとでは、適当な配列を含有しない両分及び含有する両分に対してハイ ブリダイゼーションが生ずる。さらに対照セルラインは、Ｃ５Ｆ−１を生産しな いこと以外の点においてもＬ−９２９系のそれと異るので、Ｌ−９２９４（ＩＩ 胎胞ゲル中Ｃ５Ｆ−１に関連しない多数のサイズ位置（対照中には存在しない） 中にハイブリダイゼーションが生ずる。

匹敵するセットの対照及びＬ−９２９ゲルを領域Ｂを代表する４８個の１４−マ ーの分離物（ｓｅｇｒｅｇａｔｅ　）及び領域Ｃを代表する３２個の２０−マー の分離物（ｓｅｇｒｅｇａｔｅ　）を用いてプローブする。次に、領域Ａ又はＢ 、及びＣプローブに対してＬ−９２９スラブ中で排他的にハイブリダイズするメ ツセンジャーＲＮ　Ａのバンドのみをさらに考慮する。段々強化されるストリン ジエンシーの条件下で、領域Ａ１５−マー混合物の１つ又は領域Ｂ１４−マー混 合物の１つ、及び領域Ｃ２０−マー混合物の１つと結合し続けるＲＮＡバンドを 選択する。

正しいｆｎ　Ｒ’　Ｎ　Ａバンドを見出された場合、領域Ａ１５−マーの各群を 用いて種々のストリンジエンシーの条件下でプローブする。最も高いストリンジ エンシーにおいて結合する群はおそらく、生産されたｍ　ＲＮ　Ａに正確に相補 的な正しい１５−マーを含有する。最も高いスＩ・リンジエンシーにおいて結合 する１個のオリゴマーが見出されるまで調製物をさらに分割することによって正 しい１５−マーを確認する。領域Ｂ又はＣと結合する正しい］、４−マー又は２ ０−マーを確認するために類似の方法を用いる。次に、これらの特定のオリゴマ ーを、濃縮された…ＲＮＡ画分から調製されるネズミｃＤＮＡ　ライブラリーに おけるプローブとして使用することができる。

次に、Ｃ５Ｆ−１のためのコード配列を含有するものとして同定されたＩｌｌ　 ＲＮ　Ａ画分を調製的規模で得る。この調製においては、ポリＡ”ｍＲＮＡを１ ０　ｍＭ　Ｔｒｉｓ−１１Ｃ１（ｐｌ［７，４）、１ｍＥＤＴΔ、及び０，５％ ＳＤＳ中シュークロースグラジェント上で分画した。ベックマン５Ｗ４０ロータ ー中で３０，０ＯＯｒｐ＋ｎにて１７時間遠心した陵、ｍ　ＲＮ　Ａをグラジェ ントからエタノール沈澱により回収する。グラジェントから回収されたＲＮＡ両 分をそれぞれ標準的翻訳アッセイにおいてキセノブス（Ｘｅｎｏｐｕｓ　）−の 卵ｒＪ：１ｍ胞に注射し、そしてネズミＣ５Ｆ−１に対して生じた抗体によるラ ジオイムノアッセイを用いて生成物をＣ５Ｆ−１についてアッセイする。陽性結 果が得られた両分をプールし、そしてｃＤＮＡ　ライブラリーを造成するために 使用した。これら同じ画分はオリゴマープローブとハイブリダイズする。

ｃＤＮＡ　ライブラリーを調製するための他の方法が、言うまでもなく当業界に おいてよく知られている。今や古典的となった１つの方法はオリゴｄＴプライマ ー、逆転写酵素、ポリｄＧによる２重鎖ｃＤＮＡのテイル形成、及び所望の制限 部位において開裂されそしてポリｄＣによりテイル形成されている適当なベクタ ー、例えばｐＩＩＲ３２２又はその誘導体へのアニーリングを用いる。この代替 法の詳細な記載は、例えば、同−承継人に承継され１９８３年１２月２０日に出 願された米国特許出願Ｎｏ、５６４　、２２４号に見出される。この記載を引用 によりこの明細書に組み入れる。

ここで使用される方法においては、濃縮されたｍＲＮＡ（５μｇ）を、１０＋ｎ Ｍメチル水銀を用いて２２°Ｃにて５分間処理することにより変性し、そして１ ００＋ｎＭの２−メルカプトエタノールの添加により脱毒する（　Ｐａｙｖａｒ 　、　Ｆ　、笠、Ｊ、Ｄｉｏｌ。

Ｃｂｃｍ、　（１９７９）　２５４　：　７６３６−７６４２）　、プラスミド ｐｃＤＶ　１をＫｐｎ工で開裂せしめ、ｄＴＴＰによりテイル形成し、そして変 性されたｍ　ＲＮ　Ａにアニールする。このオリゴｄＴによりプライムされたｍ 　ＲＮ　Ａを逆転写酵素により処理し、そして新たに合成されたＤＮＡ鎖にｄＣ ＴＰによりテイル形成する。最後に、ｐｃＤＶ　１ベクターの不所望の部分をｌ １ｉｎｄｌｌｌによる開裂により除去する。別途、ｐＬｌ　をＰｓｔＩで開裂せ しめ、ｄＧＴＰでテイル形成し、ｌ１ｉｎｄＩＩＩで開裂せしめ、そして次にｐ ｃＤＶ　１ベクタ一断片により延長されたポリＴテイル化ｍＲＮΔ／ｃＤＮＡ複 合木と混合し、Ｅ、コリ（Ｅ、Ｃｏ１１）リガーゼにより連結し、そして混合物 をＤＮＡポリメラーゼＩ　（Ｋｌｅｎｏｗ）Ｅ　、コリ（Ｅ、Ｃｏ１１）−リガ ーゼ、及びＲＮアーゼＨにより処理する。生ずるベクターによりＥ、コリＫＩＺ ＭＩ（２９４をＡｍｐ”に形質転換する。

次に、生ずるｃＤＮＡ　ライブラリーを、前記のようにしてｔｎ　ＲＮ　Ａ　コ ード配列に相補的であるとして同定されたオリゴマープローブを用いてスクリー ニングする。領域Ａ又はＢ、及びＢからのプローブにハイブリダイズするコロニ ーを拾い、そして増殖せしめ、プラスミドＤＮＡを単離し、そしてＣ５Ｆ−１の 完全な配列をコードするのに十分なサイズの挿入部を含有するプラスミドを単離 する。これらのプラスミドのそれぞれの挿入部の配列を決定し、そして上流部分 に領域Ａ及びＢを含有する完全コード配列を含有するプラスミド調製物をｐｃＭ ｃｓＦと命名する。

Ｆ、３．ネズミＣ５Ｆ−Ｉ　Ｄ　Ｎ　Ａの発現ヒトｃＤＮＡについて前記したの と同様にして、ネズミｃＤＮＡをＣＯＳ　Ｍ！Ｊ胞中での一時的（ｔｒａｎｓｉ ｅｎｔ）発現について試験し、そして安定に形質転換されたＣＶ−１中での発現 のために使用する。さらに、適切な旧ｎ　ｄ　ｍ　／　Ａ　Ｔ　Ｇコード配列を 変異誘発により成熟蛋白質の上流に挿入し、そして原核性発現のためにコード配 列をｐＰＬＯＰ又はｐＴＲＰ　３に挿入する。

Ｇ、宿主ベクター ｐＰＬＯＰは、ＰＬプロモーター、及びＨｉｎｄＩ［Ｉ制限開裂部位に隣接した Ｎ遺伝子リボゾーム結合部位を有し、そのためにｌｌｉｎｄ部位に先行されるＡ ＴＧ開始コドンを有するコード配列の便、利な挿入を許容する宿主発現ベクター である。このベクターのバックボーンはｐｃｓ　３　由来の温度怒受性高コピー 数プラスミドである。ｐＰＬ０１’は１９８４年１２月１８日にＡＴＣＣに寄託 され、そして受託番号３９９４７を有する。

ｐＴＲＰ　３　は、ｌ１ｉｎｄｌ制限部位のすぐ上流にｔｒｐプロモーターを含 有し、そして上記のｐＰＬＯＰと同様の態様でのコード配列の挿入を許容する宿 主発現ベクターである。ｐＴＲＰ３のバックボーンベクターはｐＢＲ３２２であ る。ｐＴＲＰ　３は１９８４年１２月１８日にＡＴＣＣに寄託され、そして受託 番号３９９４６を有する。

ｐ践旺凶童戒− 喪艷乳痒九 ｐｃｓ　３は、高温においてｐＰＬＯＰ宿主ベクターの高コピー数をもたらす複 製開始点を提供する。この造成物は１９８３年１０月１４日に出願された米国特 許出願Ｎｏ、５４１，９４８に十分に記載されており、この記載を引用によりこ の明ａ書に組み入れる。ｐｃｓ　３は１９８２年６月３日に寄託され、そしてＡ ＴＣＣＮｏ、　３９１４２が割合Ｎａｔ１．八ｃａｄ　、Ｓｃ　ｉ　、　（ＵＳ Ａ）（１９８２）７旦：　３５７０により記載されている。

このものはその複製開始点の近傍にコピー数の温度制御をもたらす変異を含有す る。

ｐＯＰ　９は、Ｃｏｌ　ＥｌタイプのプラスミドｐＯＰ６　（Ｇｅｌｆａｎｄ、 Ｄ、等、１’ｒｏｃ、Ｎａｔｌ　、Ａｃａｄ、Ｓｃｉ、（ＵＳＡつ匝：　５８６ ９）からのＥｃｏＲＩ／　Ｐｖｕ　ＩＩ開始点含有断片をｐ１３Ｒ３２２に挿入 することにより造成された、全温度において高コピー数のプラスミドである。挿 入の前に、この断片を次のように変形した。５０ｕｇのｐｏｐ　６を２０ユニツ Ｉ・ずつのＢａ＋ｎ１ｌＩ及び５ｓｔＩにより完全消化した。５ｓｔＩ３’突出 末端を除去しそしてＤａ＋＾ＩＩ　Ｉ　５　’末端をフィルインするため、消化 されたｐＯＰ６ＤＮＡｔ！−Ｅ、コリＤＮＡポリメラーゼＩ（Ｋｌｃｎｏ−によ り、まず２０℃にて３’５ｓｔＩ突出末端を除去しそして９℃にて５′末端を修 復する２段階反応において処理した。平滑末端化された断片を消化し、そしてＱ 、Ｑ２ｐｍｏｌｅを用いてコンピテントＤ　Ｇ７５　（０’　Ｆａｒｒｅｌｌ、 Ｐ、等、Ｊ、Ｂａｃｔｅｒｉ−山豆（１９７８）服工：６４５−６５４）を形質 転換した。形質転換体を５０μｍ　／　＋ｎ　１のアンピシリンを含有するＬプ レート上て選択し、そして３．３　ｋｂの欠失、５ｓｔＩ部位の喪失、及び新た に形成されたＢａ＋ｎ１１１部位の存在についてスクリーニングした。

ｐｏｒ’　７と称する１つの候補を選択し、そして２５μｇのｐＯＰ７を２０ユ ニツトのＢａ＋ｎｔｌＩで消化し、Ｅ、コリＤＮＡポリメラーゼエ断片（ｋｌｅ ｎｏｕ＋）で修復し、そしてＴ４　ＤＮＡリガーゼにより再連結することにより Ｄａｍｔｌ　Ｉ部位を除去した。コンピテントＤＧ７５を０．１μｇのＤＮＡで 処理し、そして形質転換体を５０ｕｇ／ｒｏｅのアンピシリンを含有するしプレ ート上で選択した。ｌ］０１”８を選択しな。ｐＯＰ　９を得るため、ｐ１３Ｒ ３２２からのＡｖａＩ（修復）／ＥｃｏＲＩ−Ｔｅｔ”断片を１ｌｉＪ製し、そ して単離し、そしてｐＯＰ８からの単離されたＰｖｕＩ［（部分的）／ＥｃｏＲ Ｉ　３５６０ｂｐ断片と連結した。

１．４２ｋｂ　ＥｃｏＲＩ／＾ｖａＩ（修復）Ｔｅ　ｔ　”　（［！Ｊ　Ｊｊｉ ”　Ａ　）と３．５６ｋｂ　ＥｃｏＲＩ／ＰｖｕｌＩΔｍ　ｔ　Ｒ（断片Ｂ）と の連結は、ＥｏｏＲ１末端の分子間連結に好都６なように２段階反応において０ ．５μｇの断片Ｂ及び４．５μどの断片Ａを用いた。

コンピテントＤＧ７５を５μｌの連結混合物により形質転換し、そして形質転換 体をアンピシリン（５０ｕｇ／＋ｎｌ）含有プレート上で選択した。Δ＋ｎｐ” Ｔｅｔ”形質転換体から単離されたｐＯＰ　９　は高コピー数、コリシン耐性、 ＥｃｏＲＩ、１３ｎ＋ｎｌｌ　Ｉ　、　Ｐ　ｖｕＩＩ　、ｔ（ｉｎｄｌｌ（の１ 個ずつの制限部位、ｌ［１ｎｃＩＩ　の２個の制限部位、並びに適当なサイズ及 びｌ１ａｅｌＩＩ消化パターンを示した。

ｐＣＳ　３を得るため、５０ｕｇのｐＥＷ２７ＤＮΔをＰｖｕ［及びＥｃｏＲＩ により完全消化した。同様にして、５０ｕｇのｐＯＰ　９をＰｖｕＩ［及びＥｃ ｏＲＩにより完全消化し、そして３．３Ｋｂ断片を単離した。

０．３６ｕ　ｇ　（０，３２７ｐｍｏｌｅ）ｐＥＷ２７断片及び０．３５μｇ（ ０，１６ｕｍｏｌｅ）ｐＯｒ’９断片を連結し、そしてＥ、コリＭＭ２９４を形 質転換するために使用した。ΔｍｐＲＴｃｔ”形質転換体を選択した。好結果の コロニーをまずβ−ラクタマーゼアッセイプレート上で３０℃及び４１℃にてス クリーニングし、そして次に３０°Ｃ及び４１℃における増殖後のプラスミドＤ ＮＡレベルについてスクリーニングした。ｐｃｓ　３　と称する好結果の候補を 配列決定Ｇこより確３忍した。

ＰＬＮＨ＠Ｓ挿入部の調製 Ｐ、ファージプロモーター、及びＮ−遺伝子のためのりボゾーム結６部位（ＮＲ ＠Ｓ）を含有するＤＮＡ配列を、ＦＣ５から、そして究極的にはＳＩ＋　ｉｍａ 　ｔａｋｅ及びＲｏＳｅｎｂｅｒｇ、　Ｎａｔｕｒｅ（１９８１）競ス：１２８ により記載されているｐＫｃ３０の誘導体から得た。ｐＫＣ３０は、ｐＢ　Ｒ３ ２２からの旧ｎｄＮ／ＢａｍＨＩベクター断片にクローン化されたλファージか らの２．３４ｋｂ断片を含有する。ＰＬプロモーター及びＮＲａ５はｐＫｃ３０ 中のＢｇ！ＩＩ及びｌ−１ｐａｉ部位の間のセグメントを占める。ｐＫｃ３０の 誘導体はＥｅｏＲ１部位に転換されたＢｇｌＩＩ部位を有する。

ＰＬプロモーターに直接先行するＢＦｒｌｌＩ部位を次のようにしてＥｃｏＲ（ 部位に転換した。ｐＫｃ３０をＲ８１［で消化し、ＫＩｅｎｏｕ＋及びｄＮＰＴ で修復しそしてＴ４リガーゼによりＥｃｏＲＩリンカ−にューイングランドビオ ラブスから得られる）に連結し、そしてＥ、コリＫ　１２株ＭＭ２９４λ１に形 質転換した。プラスミドをΔｍｌ）。Ｔｃｔ、形質転換体から単離し、そして目 的とする配列な制限分析及び配列決定により確認した。生じたプラスミドＬＩＦ Ｃ３をＦ’ｖｕｉ及びｌ−１ｐａ）により２重消化して単離された約５４０ｂｐ の断片を得、Ｋｌｅｎｏｗ及びｄＡＴＰで処理し、そして次に８１ヌクレアーゼ により処理して３′末端配列−八〇〇ＡＧＡＡ（ここで、−ＡＧＧＡ（：ΔはＮ 　Ｒ８Ｓである）を有する平滑末端断片を生じさせた。この断片をＥｃｏＲＩで 制限処理し、て、５’−ＥｃｏＲＩ（接着）末端及び旧ｎｆＩ（部分修復、Ｓ１ 平滑）−３′末端を有する３４７塩基対のＤＮＡ断片を得た。

、ＦＣ５を完成するため、ｐ／３Ｉ−２１５を用いてＮＲ８５の３′のｔ１ｉｎ ｄｌ１部位を形成した。ｌ）β１−Ｚ１５は、＾Ｔ（ニーｔｌ！ａｃＺに融合し またβＩＩＮの１４０ｂｐを含有する配列をｐＤＲ３２２に融合ぜしめることに より調製されたものであり、そして１９８４年１月１３日にΔＴＣＣＮｏ、３９ ５７８として寄託された。ｐβｌ−２１５においては、ｐ１３Ｒ３２２のＥｃｏ Ｒ１部位が保持されており、そして挿入部はβ−ＩＦＮのＡＴＧ開始コドンに直 接先行する旧ｎｄＩＩＩ部位を含有する。

ｐ／３１−２１５をｌ１ｉｎｄＩＩＩにより制限処理し、Ｋｌｅｎｏｗ及びｄＮ ＴＰにより修復し、そして次にＥｃｏＲＩにより消化した。生ずるＥｃｏＲＩ　 ／　１ＩｉｎｄＩＩＩ　（修復）ベクター断片を上記のＥｃｏＲＩ　／　ｌ１ｉ ｎｆ■（修復）断片と連結し、そして連結混合物を使用してＭＣ１０００−３９ ５３１を形質転換しな。好結果の造成物を含有する形質転換体を、ラクトース最 少プレート上で３４℃にて増殖するが３０℃では増殖しない能力により同定した 。（形質転換体を３０℃及び３４℃にてＸ−ｇａｔ−Ａｍｐプレート、並びに３ ０℃及び３４℃にて最少−ラクトースプレー１へ上にプレートした。適切な造成 物を含有する形質転換体は両温度においてＸ−Ｆ１ａ１−ＡＩｌｉｐプレート上 で青色であるが、しかし最少ラフＩ・−スプレート上では３４℃においてのみ増 殖する。）好結果の造成物を１）ＦＣ５と命名した。

叶以用＠完、戊２ 次に、ｐｃｓ　３を変形してＰ、及びＮＲ＊ＳＲａ配列を与えた。ｐＣＳ３をｌ ｌ１ｎｄ■で消化し、そして次にＥｃｏＲ■で消化した。ベクター断片を、ＰＬ ＮＲＩＩＳ　を含有するｐＦＣ５からの単離されたＥｃｏＲＩ／　ＩＩ　ｉ　ｎ ｄ　ＩＩＩど連結し、そしてＥ、コリＭＭ２９４に形質転換した。単離されたグ ラスミドＤＮＡの正しい構成を制限分析及び配列決定により確認し、そしてこの プラスミドをｐＰＬＯＰと命名した。

ｌ叶ユｎ１１ １１ｉｎｄＩ１１部位の後にｔｒｐ制御配列を含有する宿主ベクターを造成する ため、アテニュエーター領域を欠（ｔｒｐプロモーター／オペレーター／リボゾ ーム結き部位配列を、スタンホード大学Ｃ，Ｙａｎｏｆｓｋｙから入手したｐＶ Ｉ１１５３から得た。ｔｒｐ配列は、当業界において知られているこのような多 くの種類のプラスミド中に得られる。ｐＶＩ１１５３をＩ−Ｑａｌ（このものは 、露出された３′接着末端を残してｔｒｐプロモーターのちょうど５′を切断す る）で処理し、ＫＩｅｎｏｕ＋により平滑末端化し、そしてＴａｑＩにより部分 消化した。Ｔａｑ１部位に対応する９９ｂｐ断片、し１・ｐリーダーのＡＴＧ開 始コドンに先行する６ヌクレオチドを単離し、そしてＥｃｏＲｌ（修復）／Ｃ１ ａＩ消化されたｐＢＲ３２２に連結してｐＴＲＰ３を得た。

１９８５年４月２日、出願人はアメリカン・タイプ・カルチュア・コレクション 、ロックビル、Ｍ、Ｄ、米国（ＡＴＣＣ）にＥ、コリＤＧ９８中ファージｐＨｃ ｓＦ−１を受託番号Ｎｏ、４０１７７として寄託した。１９８５年５月２１日、 シタスのコレクションにおいてＣＭＣＣ２３１２と称されるｐＨＣ５Ｆ　−１ａ 及び寄託のためのｐＨＣ５Ｆ−１人シャロロ４ＡはＡＴＣＣに寄託され、そして 受託番号Ｎｏ、４０１８５を有する。１９８５年、６月１４日、Ｅ、コリＭＭ２ ９４中Ｃ５Ｆ−１７は、ＣＭＣＣ２３４７と称され、ＡＴＣＣに寄託され、そし て受託番号Ｎｏ、５３１４９を有する。これらの寄託は、特許手続のための微生 物の寄託の国際的承認に関するブタペスト条約及びそれに基く規則（ブタペスト 条約）の規定に基いて行われた。これは寄託の日から３０年間生存微生物の維持 を保証する。寄託はブタペスト条約の規定のもとにＡＴＣＣにより入手可能にさ れ、そして関連する米国１７許の発行の後永久且、つ無制限の入手可能性を保証 する出願人とＡＴＣＣとの間の６意にゆだねられる。ここに承継人は、培養物が 適切な条件下で培養された場合に死滅し、又は失われもしくは破損した場合に、 通知の後すみやかに同じ培養物の生存検体により置き換えることに同意する。寄 託物の入手可能性は、いずれかの政府の権威のもとてその特許法に従って認めら れた権利に反してこの発明を実施する承諾と解してはならない。

この発明の範囲は、この明細書に記載された例示的な具体例により限定されると 解されるべきではなく、添付される請求の範囲に従って決定されるべきである。

ネス゛ミｃ、ｓ戸１−１１１℃−フパ ヒトＣ５Ｆ　ＱＡＡＩ）乙〉ゴ／々シ゛イソコ°′マーブＱ−フ゛’４ｒ’ｅＧ ＬＬＩ　ＶＡＬ　ＳＥＲｃしｕ　ＴＹＲｃｙｓ　ＳＥＲＨＩＳ　ＭＥＴ　ＩＬＥ 　［、ＬＹｉ　ＧＴＡ　ＣＴＣＧＣＴ　ＣＡＣＣＴＣＣＴＣ・ＡＴＡＧＴＴ ヒＩ−Ｃ，ＳＦ：　−）　０ガμシ乙多ＪＩ　ＧＡＡＧＧＴＧＡＣＡＴＣＴＧＧ ＧＣＴＧＴＴＴＴＣＡＴＧＧＧＡＧＡＡＣＡＡＧＧＴＴＧＴＧＣＴＧＴＧＧＣＴ ＧＣＴ＾ＧＡＡＡＴ６１　ＣＣＴＧＧＧＭＡＧＣＴＧＧＡＴＴＴＧＡＧＧＧＡＴ ＧＣＴＧＴＡＴＣＣＴＧＡＧＧＴＭＧＧＧＣＡＧＡＧＣＣＴＧＴＡＧＣＡＴ１２ １　ＴｃＴＡｃｘ丁、ｕｃＡｃｃｃｃｍｃｎｍＣＴｃｃａｎＧＡｃｃＡＧｃｃｃ ｕｃｃＧｃＡｕｘｃｒｃｃｉ；ｃｘｃＡｃＴｈｒＴｒｐＬｅｕＧ１ｙＳｅｒＬｅ ｕＬｅｕＬｅｕ２４１ＧＴＴＧＧＴＣＴＧＴＣＴＣＣＴＧＧＣＧＡＧＣＡＧＧＡ ＧＴＡＴｃＡｃｃＧＡＧＧＡＧＧＴＧＴｃＧＧＡＧＴＡｃＴＧＴＡＧｃｃＡ３６ １　ＴＡＴＴＣＴＡＣＣＴＴＣＴＣＣＣＣＡＣＴＧＧＧＧＡＡＡＴＧＡＡＧＧＣ ＡＧＧＡＧＣＣＡＧＧＧＡＧＣＡＧＧＴＣＡＡＡＧＡＧ` ４２１ＧＣＡＧＴＴＧＣＡＧ父ＡＣＧＡＡＭＴＡＧＧＧＣＡＧＴＧＣＧＧＧＡＣ ＡＴＴＧｃＴＴＧＴＧＧＴＴｃｃｔＡｃＴＡＧｃＴｃｃ５４１　ＧＣＣＣＴＣＴ ＣＴ１４ＴＧＣＣＣＴＧＣＡＧＧＣＡＧＴＧＣＡＴＧＣＴＧＴＧＧＧＣＴＴＣＣ ＡＧＣＴＧＣＴＴＧＣＣ丁ＧＧＧＴ６０１　ＴＡＧＴＧＡＴＴＧＣＣＣＡＧＧＡ ＡＣＡ丁ＣＡＡＣＣＡＣＴＧＡＴＴＣＴＧＡＡＡＡＧＧＣＴＴＣＴＧＡＧＧＴＣ ＴＧＣＴＧＴＣb ６５１ＣＴＣＡＧＴＧＧＧＡＴＧＣＣＴＣＣＴＣＴＧＧＧＡＡＧＣＴＡＧＣＣＣ ＡＧＧＣＧＧＣＣＴＧＣＴＧＴＧＴＣＣＡＣＡＴＧＴ丁ＧＣ６１５１ＣＣＡＧＣ ＣＴＧＣＡＴＧＣＡＡＣＴＣＣＣＡＧＧＧＴＧＧＧＧＴＧＴＧＴＧＧＧＧＧＡＧ ＣＡＴＧＡＡＡＧＣＧＧＣＡＧＡＡＴＧb ７２１ＣＴＡＣＴＧＣＴＧＧＡＡＡＧＧＧＴＧＡＧＡＧＴＧＴＧＡＧＧＡＴＣＣ ＡＴＧＧＧＴＧＣＴＣＡＡＣＴＣＴＧＧＧＧＴ凹ＣＡＧＧ７８１ＡＴＣＣＡＧＧ ＧＣＴＣＡＡＧＴＣＣＣＣＴＧＣＣＡＴＴＣＣＣ■■ＣＴＣＣＴＧＧＣＣＴＧＡ ＴＡＣＡＴＡＡＣＡＡＧＣＧＣＴＣＡ８４１　ＣＴＡＧＧＴＡＣＣＡＡＧＣＡＣ ＴＴＴＧＣＴＭＴＧＴＡＧＴＴＣＴＧＡＣＡＧＴＡＣＣＡＣＴＡＴＧＴＧＧＴＡ ＣＡＣＡＡＡＴＡ９０１　ＣＡＧＴ丁ＴＡＴＴＡＴＣＣＡＣＡＧＡＧＡＧＧ丁Ｇ ＭＡＧＧＡＧＣＡＴＡＧＣＴＡＧＴＡＧＧＴＧＣＴＡＧＡＧＧＣＣＴＧＡＴＴ９ ６１　ＴＧＡＡＴＣＣＡＧＧＡＡＧＧＴＴＧＧＣＴＧＴＡＧＧＧＣＴＴＧＡＧＧ ＣＡＡＡＴＣＡＡＴＡＣＴＴＣＴＴＣＣＡＧＧＴＣＡＣＡ` １０２１　ＧＣＴＴ ＦＩＧ、　４ｃ １日　アレインキ、へ゛−ン〕ン アー７乞イ中ｔｔ５’　、ｊｌ、也又ＩＪ　ＩＯ／／／リンホかインＦＩＧ、６ １鴫＊＊＠１１６＠１１１に６．４ ＦＩＧ、　７ 国際調査報告 −Ｈ１１ＰＭＩＩ１１−＾、、１＾、イ　、、ＰＣＴ／ＵＳ　８６１００２３Ｂ １＋１１−自書１ｌｆｉ勘１−・Ｃ感ｔ１１１・ｐａｒ／υＳ８６１００２３Ｂ

Claims (52)

【特許請求の範囲】
1. １．組換コロニー刺激因子−１（ＣＳＦ−１）蛋白質。
2. ２．ヒトＣＳＦ−１である請求の範囲第１項に記載の蛋白質。
3. ３．ヒトｍＣＳＦ−１と実質的に同等なアミノ酸配列を有する請求の範囲第２項 に記載の蛋白質。
4. ４．ｃＣＳＦ−１の位置１５８及び２２４の間（位置１５８及び２２４を含む） の１又は複数のアミノ酸、及び／又はアミノ酸の１又は複数の配列の欠失又は保 存的置換を特徴とする請求の範囲第３項に記載の蛋白質。
5. ５．ｍＣＳＦ−１の位置５１及び５２、及び／又は位置１９１，１９２及び１９ ３の１又は複数のアミノ酸の欠失又は保存的置換を特徴とする請求の範囲第３項 に記載の蛋白質。
6. ６．ｍＣＳＦ−１の位置１５−２０、及び／又は位置７５−８４のアミノ酸の１ 又は複数の欠失又は保存的置換を特徴とする請求の範囲第３項に記載の蛋白質。
7. ７．ｍＣＳＦ−１のジスルフィド結合のために必須でない位置のシスティン残基 の欠失又は保存的置換を特徴とする請求の範囲第３項に記載の蛋白質。
8. ８．ｍＣＳＦ−１の位置５９のチロシン残基の欠失又は置換を特徴とする請求の 範囲第３項に記載の蛋白質。
9. ９．ｍＣＳＦ−１、Δ１５８−ＣＳＦ−１、及びａｓｐ５９ＣＳＦ−１から成る 群から選択される請求の範囲第３項に記載の蛋白質。
10. １０．天然ネズミＣＳＦ−１のアミノ酸配列を有する請求の範囲第１項に記載の 蛋白質。
11. １１．次の配列： 【配列があります】 及び 【配列があります】 から選択されるＮ−末端アミノ酸配列を有する請求の範囲第１項に記載の蛋白質 。
12. １２．次の配列： 【配列があります】 を含有する請求の範囲第１項に記載の蛋白質。
13. １３．実質的にクリコシル化されていない請求の範囲第１項に記載の蛋白質。
14. １４．ダイマーである請求の範囲第１項に記載の蛋白質。
15. １５．モノマーである請求の範囲第１項に記載の蛋白質。
16. １６．ＣＳＦ−１のためのコード配列を含んで成る組換ＤＮＡ配列。
17. １７．ヒトＣＳＦ−１をコードする請求の範囲第１５項に記載の組換ＤＮＡ配列 。
18. １８．前記ヒトＣＳＦ−１が天然ヒトｍＣＳＦ−１のそれと実質的に同じアミノ 酸配列を有する、請求の範囲第１７項記載の組換ＤＮＡ配列。
19. １９．前記ＣＳＦ−１が、ｍＣＳＦ−１の位置１５０及び２２４の間（位置１５ ０及び２２４を含む）の１又は複数のアミノ酸、及び／又はアミノ酸の１又は複 数の配列の欠失又は保存的置換を特徴とするアミノ酸配列を有する、請求の範囲 第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
20. ２０．前記ヒトＣＳＦ−１が、ｍＣＳＦ−１の位置５１及び５２、及び／又は位 置１９１，１９２及び１９３のアミノ酸の１又は複数個の欠失又は保存的置換を 特徴とするアミノ酸配列を有する、請求の範囲第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列 。
21. ２１．前記ヒトＣＳＦ−１が、ｍＣＳＦ−１の位置１５−２０、及び／又は位置 ７５−８４のアミノ酸の１又は複数の欠失又は保存的置換を特徴とするアミノ酸 配列を有する、請求の範囲第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
22. ２２．前記ヒトＣＳＦ−１が、ｍＣＳＦ−１のジスルフィド結合のために必須で ない位置のシスティン残基の欠失又は保存的置換を特徴とするアミノ酸配列を有 する、請求の範囲第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
23. ２３．前記ヒトＣＳＦ−１が、ｍＣＳＦ−１の位置５９のチロシン残基の欠失又 は置換を特徴とするアミノ酸配列を有する、請求の範囲第１７項に記載の組換Ｄ ＮＡ配列。
24. ２４．前記ヒトＣＳＦ−１が、ｍＣＳＦ−１、Δ１５８−ＣＳＦ−１、及びａｓ ｐ５９ＣＳＦ−１から成る群から選択されたアミノ酸配列を有する、請求の範囲 第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
25. ２５．前記ヒトＣＳＦ−１が、天然ネズミＣＳＦ−１のアミノ酸配列を有する、 請求の範囲第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
26. ２６．前記ＣＳＦ−１が次の配列： 【配列があります】 及び 【配列があります】 から選択されたＮ−末端アミノ酸配列を有する、請求の範囲第１７項に記載の組 換ＤＮＡ配列。
27. ２７．前記ヒトＣＳＦ−１が次の配列：【配列があります】 を含有する、請求の範囲第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
28. ２８．ｐＨＣＳＦ−１ａ又はＣＳＦ−１７中にコードされているアミノ酸配列の 蛋白質をコードする請求の範囲第１７項に記載の組換ＤＮＡ配列。
29. ２９．ＣＳＦ−１をコードする配列又はその少なくとも１０個の連続するアミノ 酸をコードする部分、及び単線胞生物中で機能するレプリコンを含んで成る複製 性クローニングベクター。
30. ３０．ＣＳＦ−１をコードする前記配列が、ｍＣＳＦ−１、Δ１５８−ＣＳＦ− １、及びａｓｐ５９ＣＳＦ−１から成る群から選択されたアミノ酸配列を有する 蛋白質をコードする、請求の範囲第２９項に記載のベクター。
31. ３１．適当な制御配列に作用可能に連結された請求の範囲第１６項に記載のＤＮ Ａを含んで成る発現系。
32. ３２．組換ＤＮＡ配列が、ヒトｍＣＳＦ−１のそれと実質的に同じアミノ酸配列 を有するヒトＣＳＦ−１をコードする、請求の範囲第３１項記載の発現系。
33. ３３．組換ＤＮＡ配列が、ｍＣＳＦ−１、Δ１５８−ＣＳＦ−１、及びａｓｐ５ ９ＣＳＦ−１から成る群から選択されたアミノ酸配列を有するヒトＣＳＦ−１を コードする、請求の範囲第３１項に記載の発現系。
34. ３４．ＣＳＦ−１をコードする組換ＤＮＡ配列が、ｐＨＣＳＦ−１又はｐｃＣＳ Ｆ−１７中にコードされているアミノ酸配列の蛋白質をコードする、請求の範囲 第３１項に記載の発現系。
35. ３５．適当な宿主細胞中で複製可能なベクター中に配置されている請求の範囲第 ３１項に記載の発現系。
36. ３６．適当な宿主細胞中で複製可能なベクター中に配置されている請求の範囲第 ３２項に記載の発現系。
37. ３７．請求の範囲第３１項に記載の発現系により形質転換された組換宿主細胞。
38. ３８．請求の範囲第３２項に記載の発現系により形質転換された組換宿主細胞。
39. ３９．請求の範囲第３７項の細胞を培養することを含んで成る組換ＣＳＦ−１の 製造方法。
40. ４０．請求の範囲第３８項の細胞を培養することを含んで成る組換ＣＳＦ−１の 製造方法。
41. ４１．クローンｐＨＣＳＦ−１ａ中に配置されている請求の範囲第１６項に記載 のＤＮＡ。
42. ４２．クローンｐｃＣＳＦ−１７中に配置されている請求の範囲第１６項に記載 のＤＮＡ。
43. ４３．単球からのインターフェロンの生産を増強する方法であって、該単線を有 効量の組換ＣＳＦ−１により処理することを含んで成る方法。
44. ４４．単球からのＴＮＦのごとき毒性因子の生産を増強する方法であって、該単 級を有効量の組換ＣＳＦ−１で処理することを含んで成る方法。
45. ４５．マクロファージによる標的細胞の殺滅を増張する方法であって、該マクロ ファージを有効量の組換ＣＳＦ−１で処理することを含んで成る方法。
46. ４６．単球からのＧＭ−ＣＳＦの生産を増強する方法であって、該単球を有効量 の組換ＣＳＦ−１で処理することを含んで成る方法。
47. ４７．マクロファージにおけるウィルス感染に対する耐性を誘導する方法であっ て、該マクロファージを有効量の組換ＣＳＦ−１で処理することを含んで成る方 法。
48. ４８．対象の免疫系を増強する方法であって、該対象を有効量の組換ＣＳＦ−１ に投与することを含んで成る方法。
49. ４９．哺乳類の免疫系を強化するための組成物であって、組換ＣＳＦ−１を少な くとも１つの追加の成分との混合物として含んで成る組成物。
50. ５０．前記追加の成分が医薬賦形剤である請求の範囲第４９項に記載の組成物。
51. ５１．前記追加の成分が細胞培養上清である請求の範囲第４９項に記載の組成物 。
52. ５２．前記追加の成分が細胞培養物である請求の範囲第４９項に記載の組成物。