JP5172697B2

JP5172697B2 - 硫酸透過酵素の発現が増強された微生物を用いてメチオニンおよびその前駆体ホモセリンまたはスクシニルホモセリンを製造するための方法

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Publication number: JP5172697B2
Application number: JP2008548953A
Authority: JP
Inventors: ライナー、フィゲ; ファビアン、リュー; セリーヌ、レイノー; ミシェル、シャトー; フィリップ、スケイユ
Original assignee: メタボリックエクスプローラー
Priority date: 2006-01-04
Filing date: 2006-01-04
Publication date: 2013-03-27
Anticipated expiration: 2026-01-04
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Description

発明の背景

発明の分野
本発明は、炭素源および硫黄源を含む適切な培養培地内で微生物を培養することによってメチオニンまたはその誘導体を製造するための方法に関する。本発明の対象とする微生物は、システインおよび／もしくはＣ１単位の生成を増強するように、ならびに／またはホモシステイン上へＣ１単位を転移させる能力を増大もしくは最適化するように改変される。

背景技術
システイン、ホモシステイン、メチオニンまたはＳ−アデノシルメチオニンなどの硫黄含有化合物は、細胞代謝にとって重要であり、食品または飼料添加物および医薬品として使用されるべく工業的に製造される。特に、動物が合成することのできない必須アミノ酸であるメチオニンは、多くの身体機能において重要な役割を果たす。タンパク質生合成におけるその役割とは別に、メチオニンは、メチル基転移ならびにセレニウムおよび亜鉛のバイオアベイラビリティに関与している。メチオニンはまた、アレルギーやリウマチ熱のような疾患のための治療薬として直接的に用いられる。しかしながら、製造されるメチオニンの大部分は動物用飼料に添加されている。

ＢＳＥおよび鳥インフルエンザ（chicken flu）を理由に動物由来タンパク質の使用が減少するにつれ、純粋なメチオニンに対する需要が高まっている。化学的には、Ｄ，Ｌ−メチオニンは、通常、アクロレイン、メチルメルカプタンおよびシアン化水素から製造される。しかしながら、ラセミ混合物は、例えば鶏飼料用添加物において、純粋なＬ−メチオニンほど良好には機能しない(Saunderson, C.L., (1985) British Journal of Nutrition 54, 621-633)。純粋なＬ−メチオニンは、ラセミ型メチオニンから、例えばＮ−アセチル−Ｄ，Ｌ−メチオニンのアシラーゼ処理を行うことによって製造することができるが、製造コストは大幅に増加する。環境問題に関連して純粋なＬ−メチオニンに対する需要が高まりつつあるため、メチオニンの微生物生成は魅力的である。

微生物は、細胞成分の生合成を微調整する非常に複雑な調節機構を有しており、これにより最大の増殖率が得られる。結果として、必要量のアミノ酸などの代謝産物しか合成されず、通常、野生型株の培養上澄みにおいては検出できない。細菌は、主に酵素のフィードバッグ阻害、および遺伝子転写の抑制または活性化によりアミノ酸生合成を制御する。これらの調節経路に対するエフェクターは、ほとんどの場合、関連経路の最終産物である。結果として、微生物においてアミノ酸を過剰生成させる方策には、これら制御機構の調節を解除することが必要となる。

Ｌ−メチオニン生合成経路は、多くの微生物においてよく知られている。メチオニンは、アミノ酸であるアスパラギン酸に由来するが、その合成には、システイン生合成およびＣ１代謝（Ｎ−メチルテトラヒドロフォレート）という更なる２つの経路の収束が必要である。アスパラギン酸は、一連の３種の反応によりホモセリンに変換される。次いで、ホモセリンはトレオニン／イソロイシンまたはメチオニン生合成経路へ入る。大腸菌（E.coli）において、メチオニン経路へ入るには、ホモセリンをアシル化してスクシニル−ホモセリンとすることが必要である。この活性化工程により、次いで、システインの濃縮が行われ、それによりチオエーテル含有シスタチオニンが生じ、これが加水分解されてホモシステインが得られる。Ｂ_１２依存性またはＢ_１２独立性メチルトランスフェラーゼのいずれかにより最終的なメチル転移が行われて、メチオニンが生成される。

大腸菌におけるメチオニン生合成は、ＭｅｔＪおよびＭｅｔＲタンパク質のそれぞれを介してメチオニン生合成遺伝子を抑制および活性化することによって調節される（Neidhardt, F.C. (Ed. in Chief), R. Curtiss III, J.L. Ingraham, E.C.C. Lin, K.B.Low, B.Magasanik, W.S.Reznikoff, M. Riley, M. Schaechter, and H.E. Umbarger (eds), 1996, Eschericia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology, American Society for Microbiology; Weissbach et al., 1991 Mol. Microbiol., 5, 1593-1597において検討）。ＭｅｔＪは、そのコリプレッサーであるＳ−アデノシルメチオニンと共に、遺伝子ｍｅｔＡ、ｍｅｔＢ、ｍｅｔＣ、ｍｅｔＥおよびｍｅｔＦを調節することが知られている。メチオニン生成に関与する酵素をコードする他の遺伝子（例えば、ｇｌｙＡ、ｍｅｔＥ、ｍｅｔＨおよびｍｅｔＦ）は、ＭｅｔＲによって活性化されるが、ｍｅｔＡはＭｅｔＲによって抑制される。対応する酵素はすべて、Ｃ１単位の生成およびセリンからメチオニンへのＣ１単位の転移に関与している。セリンヒドロキシメチルトランスフェラーゼをコードするＧｌｙＡは、セリンのグリシンへの変換および補酵素テトラヒドロフォレート（ＴＨＦ）上へのＣ１単位の同時転移を触媒する。メチレン−ＴＨＦ形態であるＣ１単位をメチル−ＴＨＦに還元する必要があり、その後、メチル−ＴＨＦがホモシステイン上へ転移されてメチオニンが生成され得る。この反応は、ＭｅｔＦタンパク質によって触媒される。メチル基の転移は、ビタミンＢ１２を介してＭｅｔＨにより触媒されるか、またはＭｅｔＥによって直接触媒される。ＭｅｔＨ酵素は、ＭｅｔＥ酵素よりも数百倍高い触媒反応速度を有することが知られている。ビタミンＢ１２および故に活性ＭｅｔＨの不存在下で、ＭｅｔＥは、最大で全細胞タンパク質の５％を構成し得る。活性ＭｅｔＨの存在は、おそらく、通常はＭｅｔＲを介してｍｅｔＥ転写を活性化させるホモシステインの量を
低減することによりＭｅｔＥ活性を低下させる。故に、ＭｅｔＨを介したメチオニンの生成は、大量のＭｅｔＥを発現させないことにより、細胞のための重要な資源を節約する。ホモシステインの堆積は大腸菌にとって有毒であり(Tuite et al., 2005 J. Bacteriol, 187, 13, 4362-4371)、同時に、ＭｅｔＲを介したｍｅｔＡ発現に対する制御効果を有する。従って、酵素ＭｅｔＨおよび／またはＭｅｔＥの強い発現が、効果的なメチオニン生成にとって明らかに必要である。

大腸菌において、分解された硫黄は、システインに組み込まれ、次いでメチオニン前駆体であるＯ−スクシニル−ホモセリン上へ転移される。このプロセスは硫黄基転移（transulfuration）と呼ばれる（Neidhardt, F.C. (Ed. in Chief), R. Curtiss III, J.L. Ingraham, E.C.C. Lin, K.B. Low, B. Magasanik, W.S. Reznikoff, M. Riley, M. Schaechter, and H.E. Umbarger (eds). 1996. Escherichia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology. American Society for Microbiologyにおいて検討）。システインは、Ｏ−アセチルセリンおよびＨ_２Ｓから硫黄基転移により生成される。本プロセスは、生成物であるシステインが、ＣｙｓＥにコードされたセリントランスアセチラーゼに作用することによって負のフィードバック制御を受ける。Ｏ−アセチル−セリンから同時に生成されるＮ−アセチル−セリンは、転写因子ＣｙｓＢと共に、硫黄化合物の輸送、それらのＨ_２Ｓへの還元および有機硫黄化合物であるシステイン（メチオニンと同様に必須アミノ酸である）内へのそれらの組み込みに関与する酵素をコードする遺伝子を活性化させる。

システインの不存在下では、ＭｅｔＢは、メチオニン前駆体Ｏ−スクシニルホモセリンの、アンモニア、α−ケトブチラートおよびスクシネートへの変換を触媒し、この反応はγ脱離と呼ばれる（Aitken & Kirsch, 2005, Arch Biochem Biophys 433, 166-75）。次いで、α−ケトブチラートはイソロイシンへと変換され得る。この副反応は、メチオニンの工業的製造には望ましくない。その理由は、これら２つのアミノ酸を分離するのは困難だからである。故に、低いγ脱離活性が、メチオニンの工業的製造にとって重要な態様である。米国仮特許出願ＵＳ６０／６５０，１２４（２００５年２月７日出願）には、酵素ＭｅｔＢを最適化することによってどのようにγ脱離を低減し得るかが記載されている。システイン生合成の流れを最適化することによっても、γ脱離を低下させ、従って副産物であるイソロイシンの生成を低減することができ、これは本発明の一つの実施態様を構成している。

本発明は、システインの生成が増大されていると共に、規定の炭素源および硫黄源上で増殖する微生物を用いた発酵による製造において、メチオニン、その前駆体またはその誘導生成物を製造するための方法に関する。

メチオニンの前駆体は、メチオニン特異的代謝経路の一部である代謝産物、またはこれら代謝産物から誘導され得るものと定義される。メチオニン特異的経路は、酵素ホモセリンスクシニルトランスフェラーゼ（ＭｅｔＡ）によりホモセリンをスクシニルホモセリンへ転換することから始まる。

メチオニン誘導生成物は、メチオニン転換および／または分解経路から生じる。

システイン生成を増大させるために、本発明者らは、システイン生成に関与する遺伝子の発現を増強した。

用語「増強」は、本発明において、例えば、遺伝子コピー数を増大させる、強いプロモーターを使用する、または増大された活性を有する対立遺伝子を使用する、および、おそらくはこれらの方法を組み合わせることによって、対応するＤＮＡによりコードされる酵素の細胞内活性を増大させることを意味する。

本明細書中で使用される用語「増大された発現」または「増強された発現」はいずれも同様の意味を有する。

遺伝子の発現を増大させるために、該遺伝子は、染色体内で、または染色体外でコードされてもよい。染色体内では、当業者に知られている組み換え方法により導入され得る１つまたは複数のコピーがゲノム上にあってもよい。染色体外では、遺伝子は、複製起点が異なり、それに伴ってそれらの細胞内でのコピー数が異なる様々な種類のプラスミドに担持されていてもよい。それら遺伝子は、１〜５個のコピー、約２０個または最大５００個のコピーとして存在してもよく、これらは、厳密な複製を有する低コピー数のプラスミド（ｐＳＣ１０１，ＲＫ２）、低コピー数のプラスミド（ｐＡＣＹＣ，ｐＲＳＦ１０１０）または高コピー数のプラスミド（ｐＳＫｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ）に相当する。

本発明の好ましい実施態様において、遺伝子は、誘発因子分子により誘発される必要があるか、またはその必要がない、様々な強度のプロモーターを用いて発現させてもよい。これらのプロモーターは同種であっても、異種であってもよい。例としては、プロモーターＰｔｒｃ、Ｐｔａｃ、Ｐｌａｃ、λプロモーターｃＩまたは当業者に知られている他のプロモータが挙げられる。

標的遺伝子の発現は、対応するメッセンジャーＲＮＡ（Carrier and Keasling (1998) Biotechnol. Prog. 15, 58-64）またはタンパク質（例えば、ＧＳＴタグ（Amersham Biosciences））を安定化または不安定化させる因子によって、促進または低減されてもよい。

本発明はまた、本発明に従って増強すべき遺伝子の１つまたは幾つかの対立遺伝子を含有する微生物に関する。

本発明の特定の実施態様では、システイン生成に関与する遺伝子の発現が増強される。

システイン生成に関与する遺伝子は、硫黄源の取り込み（import）、該硫黄源の硫化水素への転換、および硫化水素または硫黄源のシステインまたはその誘導体への同化に必要なタンパク質をコードする遺伝子を含む。

大腸菌において、これらのタンパク質は、以下の遺伝子（アクセッション番号および対応するポリペプチドの機能も示す）によってコードされる。

本発明の説明では、遺伝子およびタンパク質は、大腸菌の対応する遺伝子の名称を用いて識別される。しかしながら、特記されない限り、これら名称の使用は、本発明によるより包括的な意味を有し、他の生物、より特定的には微生物の、対応する遺伝子およびタンパク質のすべてを包含する。

ＰＦＡＭ（アラインメントのタンパク質ファミリーデータベースおよび隠れマルコフモデル；http://www.sanger.ac.uk/Software/Pfam/）は、タンパク質配列アラインメントを多数集めたものである。各ＰＦＡＭにより、多重アラインメントを視覚化し（タンパク質ドメインを参照のこと）、生物間の分布を評価し、他のデータベースへのアクセスを獲得し、既知のタンパク質構造を視覚化することができる。

３０個の主要な系統発生系を示す６６個の完全に配列決定されたゲノムからのタンパク質配列を比較することにより、ＣＯＧ（タンパク質のオーソロガス群のクラスター；http://www.ncbi.nlm.nih.gov/COG/）が得られる。各ＣＯＧは、少なくとも３つの系から規定されるので、前に保存されたドメインを同定することができる。

相同配列およびそれらの相同性（％）を同定する手段は、当業者によく知られており、特にＢＬＡＳＴプログラムが挙げられる。このプログラムは、ウェブサイトhttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/から、このウェブサイト上に示されたデフォルトパラメーターと共に利用することができる。次いで、例えばプログラムＣＬＵＳＴＡＬＷ(http://www.ebi.ac.uk/clustalw/)またはＭＵＬＴＡＬＩＮ（http://prodes.toulouse.inra.fr/multalin/cgi-bin/multalin.pl）を、これらウェブサイト上に示されたデフォルトパラメーターと共に用いて、得られた配列を活用する（例えば、整列させる）ことができる。

ＧｅｎＢａｎｋ上で得られる既知の遺伝子に関する参考番号を用いて、当業者は、他の生物、細菌株、酵母、菌類、哺乳類、植物などにおける同等の遺伝子を決定することができる。この常套作業は、有利には、他の微生物由来の遺伝子との配列アラインメントを行い、縮重プローブを設計して、他の生物における対応する遺伝子をクローニングすることにより決定することができるコンセンサス配列を使用して行われる。これらの分子生物学の常套手段は、当業者によく知られており、例えば、Sambrook et al. (1989 Molecular Cloning: a Laboratory Manual. 2^nd ed. Cold Spring Harbor Lab., Cold Spring Harbor, New York)に記載されている。

一つの好ましい実施態様として、本発明の方法において用いられる微生物は、セリントランスアセチラーゼをコードするｃｙｓＥの発現を増大させるように改変される。

本発明はまた、本発明に従ってセリントランスアセチラーゼをコードする１つまたは幾つかの対立遺伝子を含有する微生物に関する。

かかる株は、γ−シスタチオニン合成（ＭｅｔＢにより触媒される反応）のための基質濃度を高めることによって、メチオニンに向かう流束を増大させることが可能なシステイン代謝を備えるという事実により特徴づけられる。システイン濃度が低いと、ＭｅｔＢ酵素は、スクシニル−ホモセリンからアンモニア、スクシネートおよびα−ケトブチラートを生成する。この反応はγ脱離と呼ばれる。システイン濃度が高くなると、α−ケトブチラートの生成量が低下し、故にメチオニンへの流動が増大する。

セリントランスアセチラーゼ活性の発現の増強は、セリンおよびアセチル−ＣｏＡを用いた酵素テストにおいて検証することができる。この反応は、セリントランスアセチラーゼ活性を含有するタンパク質抽出物を添加することにより開始され、Ｏ−アセチル−セリンの形成は、タンパク質沈殿およびシリル化試薬による誘導体化の後にＧＣ−ＭＳによってモニタリングされる。

本発明はまた、Ｏ−アセチルセリンスルフヒドリラーゼをコードするｃｙｓＭ遺伝子の発現増強に関するものであり、これにより、チオ硫酸塩のスルホシステインへの組み込みが増加し、システイン生成が促進される。

故に、本発明は、システイン生成を最適化することにより、γ脱離を低下させ、従ってイソロイシン生成を低減させる方法を対象とする。

本発明による異種プロモーターは、改変した野生型プロモーター、または他の生物もしくは全体的に合成したプロモーターから得られる任意のプロモーターとして理解される。好ましくは、異種プロモーターはＰｔｒｃ、Ｐｔａｃ、λｃＩまたは当業者に知られている他のプロモーターなどの強いプロモーターである。

本発明の別の好ましい実施態様では、メチオニンまたはその誘導体を生成するために微生物を使用する方法が対象とされ、Ｃ１単位の生成および／またはＣ１単位をホモシステイン上へ転移させる能力に関与する遺伝子の発現が増大または最適化される。

本発明によれば、最も高いメチオニン生成を得るように、関与遺伝子の発現レベルを適合させることによって、最適化が達成される。ほとんどの場合、これは、例えば、異種プロモーターを用いて関与遺伝子の発現ライブラリを作製し、スクリーニングして最良の生成株（producer）を得ることによって行われる。

本発明によれば、Ｃ１単位という用語は、メチル、メチレン、メテニルまたはホルミル基として、キャリア分子テトラヒドロフォレートに結合される単一の炭素原子をいう。

「転移させる能力」という用語は、Ｃ１単位をホモシステイン上に転移させる微生物の能力をいう。この能力は、本発明者らによって増強および／または最適化されたＭｅｔＦおよび／またはＭｅｔＨの活性により決定される。

Ｃ１単位の生成に関与する遺伝子は以下の通りである。

ホモシステイン上へのＣ１単位の転移に関与する遺伝子は以下の通りである。

本発明の特に好ましい実施態様では、メチオニンの製造に使用される微生物は、ｍｅｔＦもしくはｍｅｔＨ、またはその両方の発現を増大させるか、または異種プロモーターからｍｅｔＦを発現させるように改変される。

増強されたビタミンＢ１２依存性メチオニンシンターゼ（ＭｅｔＨ）活性は、ビタミンＢ１２およびＳＡＭの存在下、メチル−ＴＨＦおよびホモシステインを用いた酵素テストにおいて検証することができる。メチレンテトラヒドロフォレート還元酵素活性を含有するタンパク質抽出物を添加することによって反応が開始され、メチオニン形成は、タンパク質沈殿およびシリル化試薬による誘導体化の後にＧＣ−ＭＳによってモニタリングされる。

メチオニン生合成に関与する更なる遺伝子の発現を増大させることによってメチオニン生成を更に増大させることができ、これもまた、本発明の目的である。

これらの遺伝子は以下の通りである。

更に、メチオニンを分解する、またはメチオニン生成経路から逸脱する経路における遺伝子の発現を低減するか、または該遺伝子を欠失させてもよい。

アナプレロティック（補充）反応は、以下の遺伝子を発現させることによって促進してもよい。

酢酸塩消費反応は、以下の遺伝子を過剰発現させることによって促進してもよい。

Ｌ−メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物の生成の更なる増加は、次の遺伝子の１つまたは幾つかを過剰発現させることによって達成することができる：ピルビン酸カルボキシラーゼ（例えばRhizobium etli（ｐｙｃ，Ｕ５１４３９））またはその相同体の１つ、好ましくはフィードバック感度が低下した、遺伝子ｔｈｒＡ（ホモセリンデヒドロゲナーゼ／アスパルトキナーゼ、１７８６１８３）、ｍｅｔＬ（ホモセリンデヒドロゲナーゼ／アスパルトキナーゼ、ｇ１７９０３７６）またはｌｙｓＣ（アスパルトキナーゼ、１７９０４５５）およびａｓｄ（アスパルテートセミアルデヒドデヒドロゲナーゼ）によりコードされたホモセリン合成酵素。

Ｌ−メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物の生成の更なる増加は、特許出願ＪＰ２０００１５７２６７−Ａ／３（ＧｅｎＢａｎｋ１７９０３７３も参照）に示唆されているように、メチオニンレギュロンの下方調節を担うリプレッサータンパク質の遺伝子ＭｅｔＪを欠失させることによって達成される。

メチオニン生成は、国際特許出願ＷＯ２００５／１１１２０２（本明細書の一部とする）に記載されるように、その抑制因子ＳＡＭおよびメチオニンに対するフィードバック感度が低下したホモセリンスクシニルトランスフェラーゼ対立遺伝子を使用することによって更に増大される。

Ｌ−メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物の生成の増加は、以下の遺伝子の１つの活性を減衰させるか、または該遺伝子を欠失させることによって達成することができる。

「減衰」という用語は、本発明において、酵素の発現を低下させる、該酵素の安定性を低下させる、その分解を増大させる、および／または当業者に知られている他の解決策などの方策による、該酵素の細胞内活性の低下を意味する。

メチオニン生成は、改変ｍｅｔＢ対立遺伝子を使用することによって更に増大させてもよく、この改変ｍｅｔＢ対立遺伝子は、優先的または排他的にＨ_２Ｓを利用することにより、国際特許出願ＷＯ２００４／０７６６５９（その内容を、参照することにより本明細書の一部とする）に記載されているように、Ｏ−スクシニル−ホモセリンからホモシステインを生成する。

Ｌ−メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物の発酵生成に使用される硫黄源は、次のいずれかまたはそれらの組み合わせであってもよい：硫酸塩、チオ硫酸塩、硫化水素、ジチオン酸塩、亜ジチオン酸塩、亜硫酸塩。

本発明の好ましい実施態様では、硫黄源は硫酸塩および／またはチオ硫酸塩である。

本発明はまた、Ｌ−メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物の製造方法に関し、この方法は、上述のメチオニン生成微生物の発酵、メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物の濃縮、および発酵ブロスの所望生成物の単離を含む。

本発明によれば、「培養」および「発酵」という用語は、単純な炭素源を含有する適切な培養培地上での微生物の増殖を意味するものとして区別なく使用される。

本発明によれば、単純な炭素源は、微生物、特に細菌を普通に増殖させるために、当業者が使用できる炭素源である。特に、グルコース、ガラクトース、スクロース、ラクトースまたはモラスなどの吸収可能な糖、またはこれら糖の副産物であり得る。特に好ましい単純炭素源はグルコースである。別の好ましい単純炭素源はスクロースである。

当業者は、本発明による微生物のための培養条件を規定することができる。特に、細菌類は、２０℃〜５５℃、好ましくは２５℃〜４０℃、より特定的にはC.glutamicumの場合には約３０℃、および大腸菌の場合には約３７℃の温度で発酵される。

発酵は、使用する細菌に適合した既知の規定された組成を有する無機培養培地を備えた発酵槽において行われるのが一般的であり、該無機培養培地は、少なくとも１種の炭素源と、必要であれば代謝産物を生成するのに必要な補基質とを含有する。

特に、大腸菌用の無機培養培地は、Ｍ９培地（Anderson, 1946, Proc. Natl. Acd. Sci. USA 32:120-128）、Ｍ６３培地（Miller, 1992; A Short Course in Bacterial Genetics: A Laboratory Manual and Handbook for Escherichia coli and Related Bacteria, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York）またはSchaeferらにより規定されるもののような培地（1999, Anal. Biochem. 270:88-96）と同一または同様の組成であり得る。

同様に、C.glutamicum用の無機培養培地は、ＢＭＣＧ培地（Liebl et al., 1989, Appl. Microbiol. Biotechnol. 32: 205-210）またはRiedelらにより記載されるような培地（2001, J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 3: 573-583）と同一または同様の組成であり得る。これらの培地を補充して、変異により導入される栄養要求性を補うことができる。

発酵後、Ｌ−メチオニン、その前駆体またはその誘導化合物を回収し、必要であれば精製する。培養培地で生成した化合物（メチオニンなど）の回収および精製方法は、当業者によく知られている。

場合により、発酵生成物の精製を行っている間、０％〜１００％のバイオマスを保持してもよい。

本発明はまた、メチオニンの発酵生成に合わせて最適化される微生物にも関する。

「最適化された微生物」という用語は、上述の改変が組み込まれて、所望の代謝産物を生成するため、および、おそらくは副産物の生成を最小限に抑えるために最良な工業的性能をもたらす微生物を指す。

好ましい実施態様では、前記生物は、大腸菌またはC.glutamicumまたはSaccharomyces cerevisiaeのいずれかである。

最も好ましい実施態様では、前記生物は大腸菌である。

発明の具体的説明

ｍｅｔＪ遺伝子にコードされるメチオニンリプレッサーがクロラムフェニコールカセットにより置換されており（ΔｍｅｔＪ：：Ｃｍ）、かつ、メチオニンおよびＳＡＭに対するフィードバック感度が低下したｍｅｔＡ対立遺伝子を有する（ｍｅｔＡ^＊１１）大腸菌株が、２００４年５月１２日に出願されたＰＣＴ国際特許出願ＰＣＴ／ＩＢ０４／００１９０１に記載されている。この株に、以下の遺伝的改変を導入した。

ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：：Ｋｍの構築
異種Ｐｔｒｃプロモーターの制御下にｍｅｔＦ遺伝子をクローニングするために、Datsenko&Wanner(2000)により記載された相同組み換え法を用いた。この方法により、関与遺伝子近傍にクロラムフェニコールまたはカナマイシン耐性カセットを挿入することができる。この目的のため、以下のオリゴヌクレオチドを使用した。

このオリゴヌクレオチドは、以下の領域を有する：
−遺伝子ｍｅｔＦの配列（４１３０２５９−４１６０１９５）と相同な領域（大文字）（ウェブサイトhttp://genolist.pasteur.fr/Colibri/の参照配列）；
−ＲＢＳ（太字）、−３５および−１０ボックス（太字）を有するプロモーターＰｔｒｃ配列と相同な配列（斜体）；
−カナマイシン耐性カセットの増幅用領域（大文字）（Datsenko, K.A. & Wanner, B.L., 2000, PNAS, 97: 6640-6645における参照配列）。

このオリゴヌクレオチドは、以下の領域を有する：
− 遺伝子ｍｅｔＦの領域の配列（４１３０１１４−４１３０１９５）と相同な領域（小文字）（ウェブサイトhttp://genolist.pasteur.fr/Colibri/の参照配列）；
−バクテリオファージＴ７末端の配列（ＧｅｎｂａｎｋＶ０１１４６）と相同な領域（斜体、小文字）；
−カナマイシン耐性カセットの増幅用領域（大文字）（Datsenko, K.A. & Wanner, B.L., 2000, PNAS, 97: 6640-6645における参照配列）。

オリゴヌクレオチドＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＦおよびＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＲを使用して、プラスミドｐＫＤ４からカナマイシン耐性カセットを増幅した。次いで、得られたＰＣＲ産物をエレクトロポレーションにより株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔJ（ｐＫＤ４６）に導入した。この株では、発現したＲｅｄ組み換え酵素により相同組み換えが可能となる。カナマイシン耐性形質転換体を選択し、以下に規定されるオリゴヌクレオチドＰｔｒｃ−ｍｅｔＦｖＦおよびＰｔｒｃ−ｍｅｔＦｖＲを用いたＰＣＲ分析により、耐性カセットの挿入を検証した。

Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＦｖＦ（配列番号３）：GCCCGGTACTCATGTTTTCGGGTTTATGG（４１２９８６６〜４１２９８９４の配列と相同である）；
Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＦｖＲ（配列番号４）：CCGTTATTCCAGTAGTCGCGTGCAATGG（４１３０５２４〜４１３０４９７の配列と相同である）。

得られた株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔJ Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＦ：Ｋｍと命名した。

プラスミドｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ ^＊１−ｃｙｓＥの構築
ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ ^＊１
ホモセリンの生成を促進するために、トレオニンに対するフィードバック耐性が低下したアスパルトキナーゼ／ホモセリンをコードするｔｈｒＡ^＊を、プロモーターＰｔｒｃを用いてプラスミドｐＣＬ１９２０（Lerner & Inouye, 1990, NAR 18, 15, p. 4631）から発現させた。プラスミドｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１を構築するために、以下のオリゴヌクレオチドを用いてゲノムＤＮＡからｔｈｒＡをＰＣＲ増幅した：
ＢｓｐＨ１ｔｈｒＡ（配列番号５）：ttaTCATGAgagtgttgaagttcggcggtacatcagtggc；
Ｓｍａ１ｔｈｒＡ（配列番号６）：ttaCCCGGGccgccgccccgagcacatcaaacccgacgc。

ＰＣＲ増幅した断片を、制限酵素ＢｓｐＨＩおよびＳｍａＩで切断し、ベクターｐＴＲＣ９９Ａ（Stratagene）のＮｃｏＩ／ＳｍａＩ部位にクローニングした。低コピーベクターからの発現のために、プラスミドｐＭＥ１０１を以下のように構築した。プラスミドｐＣＬ１９２０を、オリゴヌクレオチドＰＭＥ１０１ＦおよびＰＭＥ１０１Ｒを用いてＰＣＲ増幅し、ｌａｃＩ遺伝子を有するベクターｐＴＲＣ９９ＡからのＢｓｔＺ１７Ｉ−ＸｍｎＩ断片およびＰｔｒｃプロモーターを、増幅したベクター内に挿入した。得られたベクターおよびｔｈｒＡ遺伝子を有するベクターを、ＡｐａＩおよびＳｍａＩにより制限処理し、ｔｈｒＡ含有断片をベクターｐＭＥ１０１にクローニングした。フィードバック阻害からＴｈｒＡを解放するために、オリゴヌクレオチドＴｈｒＡＦＦ３１８ＳおよびＴｈｒＡＲＦ３１８Ｓを使用した部位特異的突然変異誘発（Stratagene）によって変異Ｆ３１８Ｓを導入することにより、ベクターｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１を得た。

ＰＭＥ１０１Ｆ（配列番号７）：Ccgacagtaagacgggtaagcctg；
ＰＭＥ１０１Ｒ（配列番号８）：Agcttagtaaagccctcgctag；
ＴｈｒＡＦＦ３１８Ｓ（ＳｍａＩ）（配列番号９）：Ccaatctgaataacatggcaatg[tcc]agcgtttctggcccggg；
ＴｈｒＡＲＦ３１８Ｓ（ＳｍａＩ）（配列番号１０）：Cccgggccagaaacgct[gga]cattgccatgttattcagattgg。

ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ ^＊１−ｃｙｓＥ
ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥを構築するために、オリゴヌクレオチドＯｍｅＢ００１およびＯｍｅＢ００２を用いたＰＣＲによりｃｙｓＥ遺伝子を増幅し、ＰＣＲ産物を制限酵素ＰｖｕＩＩで切断し、ベクターｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１のＳｍａＩ部位にクローニングし、結果としてベクターｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥを得た。

ＯｍｅＢ００１＿ｃｙｓＥＲ−ＰｖｕＩＩ（配列番号１１）：
GGAGGGACAGCTG[ATACGAAAGAAGTCCGCGAACTGGCGC]；
ＯｍｅＢ００２＿ｃｙｓＥＦ−ＰｖｕＩＩ（配列番号１２）：
Atacgcagctg[ggacattagatcccatccccatactcaaatgtatgg]。

ＰｖｕＩＩ部位には下線を引いた。括弧内の配列はｃｙｓＥ（Colibri）（３７８０４２３−３７８０３９７）に相当する。

ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ：：Ｋｍの構築
メチオニンの生成を促進するために、Ｐｔｒｃプロモーターを用いてｍｅｔＨ遺伝子を過剰発現させた。構築のために、以下のオリゴヌクレオチドを使用した。

このオリゴヌクレオチドは、以下の領域を有する：
−遺伝子ｍｅｔＨの配列（４２２１４６１−４２２１４０８）と相同な領域（小文字）（ウェブサイトhttp://genolist.pasteur.fr/Colibri/の参照配列）
−ＲＢＳ（太字）、−３５および−１０ボックス（太字）を有するプロモーターＰｔｒｃ配列と相同な領域（斜体、大文字）；
−カナマイシン耐性カセットの増幅用領域（大文字）（Datsenko, K.A. & Wanner, B.L., 2000, PNAS, 97: 6640-6645における参照配列）。

このオリゴヌクレオチドは、以下の領域を有する：
−遺伝子ｍｅｔＨの領域の配列（４２２１３２７−４２２１４０６）と相同な領域（斜体、大文字）（ウェブサイトhttp://genolist.pasteur.fr/Colibri/の参照配列）；
−カナマイシン耐性カセットの増幅用領域（大文字）（Datsenko, K.A. & Wanner, B.L., 2000, PNAS, 97: 6640-6645における参照配列）。

オリゴヌクレオチドＤｉｃｌＲ−ｍｅｔＨＦおよびｉｃｌＲ−ｍｅｔＨＦを使用して、プラスミドｐＫＤ４からカナマイシン耐性カセットを増幅した。次いで、得られたＰＣＲ産物を、エレクトロポレーションによって株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ（ｐＫＤ４６）に導入した。この株では、Ｒｅｄ組み換え酵素を発現させることにより、相同組み換えが可能となった。カナマイシン耐性形質転換体を選択し、以下に規定されるオリゴヌクレオチドｉｃｌＦおよびｉｃｌＲを用いたＰＣＲ分析によって、耐性カセットの挿入を検証した。
ｉｃｌＦ（配列番号１５）：CCTTTGAGGTCGCATGGCCAGTCGGC（４２２１５５８〜４２２１５３３の配列と相同である）；
ｉｃｌＲ（配列番号１６）：GCTTTTTAATAGAGGCGTCGCCAGCTCCTTGCC(４２１９９１７〜４２１９９４９の配列と相同である)。

得られた株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ：Ｋｍと命名した。

ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：ＫｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨの構築
株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：ＫｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨを構築するために、クロラムフェニコールおよびカナマイシン耐性カセットを、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ：Ｋｍから取り除いた。

クロラムフェニコール耐性カセットのＦＲＴ部位で作用するＦＬＰリコンビナーゼを担持するプラスミドｐＣＰ２０を、エレクトロポレーションにより組み換え株に導入した。４２℃での一連の培養後、２つのカセットの欠失をＰＣＲ分析により検証した。保持された株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＨと命名した。

プロモーター構築物Ｐｔｒｃ：：ｍｅｔＦ：Ｋｍを株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ内に転移させるために、ファージＰ１形質導入法を用いた。以下のプロトコールを二段階で実施した：株ＭＧ１６５５ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：Ｋｍのファージ溶解物を調製し、次いで、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ内へそれを形質導入した。

ファージ溶解物Ｐ１の調製：
−１０ｍｌのＬＢ＋Ｋｍ５０μｇ／ｍｌ＋グルコース０．２％＋ＣａＣｌ_２５ｍＭに、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：Ｋｍの一夜培養物１００μｌを植菌する。
−３７℃で３０分間振とうしながらインキュベートする。
−株ＭＧ１６５５上で調製された１００μｌのファージ溶解物Ｐ１（約１．１０^９ファージ／ｍｌ）を添加する。
−全ての細胞が溶解するまで、３７℃で３時間振とうする。
−２００μｌのクロロホルムを添加し、渦流動させる。
−４５００ｇで１０分間遠心分離にかけ、細胞片を取り除く。
−上澄みを殺菌チューブへ移し、２００μｌのクロロホルムを添加する。
−４℃で溶解物を保存する。

形質導入
−ＬＢ培地における株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＨの一夜培養物５ｍｌを１５００ｇで１０分間遠心分離にかける。
−２．５ｍｌの１０ｍＭＭｇＳＯ_４および５ｍＭＣａＣｌ_２に細胞ペレットを懸濁させる。
−対照チューブ：細胞１００μｌ、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：ＫｍのファージＰ１１００μｌ。
−試験チューブ：細胞１００μｌ、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：ＫｍのファージＰ１１００μｌ。
−３０℃で３０分間、振とうせずにインキュベートする。
−各チューブに１Ｍ酢酸ナトリウム１００μｌを添加し、渦流動させる。
−１ｍｌのＬＢを添加する。
−３７℃で１時間、振とうしながらインキュベートする。
−７０００ｒｐｍで３分間チューブを遠心分離にかけた後、ＬＢ＋Ｋｍ５０μｇ／ｍｌを皿の上に広げる。
−３７℃で一晩インキュベートする。

株の検証
カナマイシン耐性形質転換体を選択し、プロモーター構築物Ｐｔｒｃ−ｍｅｔＦ：Ｋｍの存在を、上述のオリゴヌクレオチドＰｔｒｃ−ｍｅｔＦｖＦおよびＰｔｒｃ−ｍｅｔＦｖＲを用いたＰＣＲ分析により検証した。保持された株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：Ｋｍと命名した。

ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：：Ｋｍの構築
異種Ｐｔｒｃプロモーターの制御下にｃｙｓＭ遺伝子をクローニングするために、Datsenko&Wanner(2000)によって記載された相同組み換え法を用いた。本方法により、関連遺伝子の近傍にクロラムフェニコールまたはカナマイシン耐性カセットを挿入することができる。この目的のため、以下のオリゴヌクレオチドを使用した。

このオリゴヌクレオチドは、以下の領域を有する：
−遺伝子ｃｙｓＭの配列（２５３７６２７−２５３７６８１）と相同な領域（小文字）（ウェブサイトhttp://genolist.pasteur.fr/Colibri/の参照配列）
−ＲＢＳ（太字）、−３５および−１０ボックス（太字）を有するプロモーターＰｔｒｃ配列と相同な領域（斜体、小文字）；
−カナマイシン耐性カセットの増幅用領域（大文字）（Datsenko, K.A. & Wanner, B.L., 2000, PNAS, 97: 6640-6645における参照配列）。

このオリゴヌクレオチドは、以下の領域を有する：
− 遺伝子ｃｙｓＭの領域の配列（２５３７７３４−２５３７６８４）と相同な領域（小文字）（ウェブサイトhttp://genolist.pasteur.fr/Colibri/の参照配列）；
−バクテリオファージＴ７末端の配列（ＧｅｎｂａｎｋＶ０１１４６）と相同な領域（斜体、大文字）；
−カナマイシン耐性カセットの増幅用領域（大文字）（Datsenko, K.A. & Wanner, B.L., 2000, PNAS, 97: 6640-6645における参照配列）。

オリゴヌクレオチドＰｔｒｃ−ｃｙｓＭＦおよびＰｔｒｃ−ｃｙｓＭＲを使用して、プラスミドｐＫＤ４からカナマイシン耐性カセットを増幅した。次いで、得られたＰＣＲ産物をエレクトロポレーションにより株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ（ｐＫＤ４６）に導入した。この株では、Ｒｅｄ組み換え酵素が発現し、それにより相同組み換えが可能となった。次いで、カナマイシン耐性形質転換体を選択し、以下に規定されるオリゴヌクレオチドＰｔｒｃ−ｃｙｓＭｖＦおよびＰｔｒｃ−ｃｙｓＭｖＲを用いたＰＣＲ分析により、耐性カセットの挿入を検証した。

Ｐｔｒｃ−ｃｙｓＭｖＦ：ggtgacaagaatcagttccgc（２５３７２６２〜２５３７２８２の配列と相同である）（配列番号１９）；
Ｐｔｒｃ−ｃｙｃＭｖＲ：GCGTTTATTCGTTGGTCTGC（２５３７８３３〜２５３７８１４の配列と相同である）（配列番号２０）。

得られた株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＪＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：：Ｋｍと命名した。

ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：：Ｋｍの構築
株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：：Ｋｍを構築するために、上述のように、プラスミドｐＣＰ２０を用いて、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：ＫｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨからクロラムフェニコールおよびカナマイシン耐性カセットを取り除いた。保持された株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨと命名した。

プロモーター構築物Ｐｔｒｃ−ｃｙｓＭを株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ内に移行させるために、ファージＰ１形質導入法を用いた。以下のプロトコールを二段階で実施した：株ＭＧ１６５５ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：Ｋｍのファージ溶解物を調製し、次いで、上述のような株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ内へそれを形質導入した。保持された株は、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：Ｋｍと命名した。

対立遺伝子ｍｅｔＡ ^＊１１およびΔｍｅｔＪによる、ｃｙｓＥおよびｍｅｔＨの増強された発現と、ｍｅｔＦおよびｃｙｓＭの最適化された発現との組み合わせ
株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：Ｃｍ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１）、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ：Ｋｍ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥ）、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：Ｋｍ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥ）およびＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：Ｋｍ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥ）を構築するために、プラスミド（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１）または（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥ）を、形質転換により、株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：Ｃｍ、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨ：Ｋｍ、ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪ：：ＣｍＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ：ＫｍおよびＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＦＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｃｙｓＭ：Ｋｍに導入した。

異種プロモーターの制御下における、ｃｙｓＥ、ｍｅｔＨおよび／またはｃｙｓＭおよび／またはｍｅｔＦの発現が増強されたメチオニン生成株の評価
小エルレンマイヤーフラスコ内で、初めに生産株を評価した。２．５ｇ／ｌグルコースを含むＬＢ培地内で前培養物を増殖させ、これを使用して、最小培地ＰＣ１に一夜培養物を植菌した。この培養物を供給し、０．０１ｇ．Ｌ^−１のビタミンＢ１２を補充した培地ＰＣ１に５０ｍｌの培養物を植菌しＯＤ６００を０．２とした。特に示した場合には、硫酸アンモニウムの代わりに５．６ｇ／ｌのチオ硫酸アンモニウムを使用した。必要に応じて、スペクチノマイシンを１００ｍｇ／ｌの濃度で添加した。ＯＤ６００が４．５〜５に達したら、ＯＰＡ／Ｆｍｏｃ誘導体化後にＨＰＬＣによって細胞外アミノ酸を定量し、他の関連代謝産物をシリル化後にＧＣ−ＭＳを用いて分析した。

表２に見られるように、メチオニンの量は、ｃｙｓＥ、ｃｙｓＥおよびｍｅｔＨ、またはｃｙｓＥ、ｍｅｔＨの過剰発現およびｍｅｔＦの完全に変性された発現により増大する。ｃｙｓＭの発現が増強されることにより、メチオニン生成が更に増大し得る。幾つかの株は、チオ硫酸塩の存在下、より多くの量のメチオニンを生成した。ｃｙｓＥ、ｃｙｓＭおよびｍｅｔＨを過剰発現し、かつ、ｍｅｔＦ発現がチオ硫酸塩の存在下でＰｔｒｃプロモーターの制御下にある場合に、最も高いメチオニン生成が得られる。イソロイシン生成は、ｃｙｓＥおよびｍｅｔＨの発現により劇的に低減され、これはγ脱離活性の低下を示している。ｃｙｓＭの過剰発現により、異種プロモーターからｃｙｓＥおよびｍｅｔＨを過剰発現させ、かつｍｅｔＦを発現させる株におけるγ脱離が低減される。

３．ＣｙｓＥおよびＭｅｔＨの酵素活性における変化の測定
ｃｙｓＥおよびｍｅｔＨ発現における変化を検証するために、対応する酵素の活性を粗抽出物において測定した。

酵素活性をｉｎｖｉｔｒｏで測定するために、大腸菌株を上述のような最小培地内で培養し、中対数期に回収した。冷リン酸カリウム緩衝液中に細胞を再懸濁し、氷上で超音波分解した（Ｂｒａｎｓｏｎソニファイアー、７０W）。遠心分離後、上澄みに含有されたタンパク質を定量した（Bradford, 1976）。

セリンアセチルトランスフェラーゼ活性（ＣｙｓＥ）を測定するために、１００ｍＭリン酸カリウム（ｐＨ７．５）、４ｍＭアセチル−ＣｏＡ、３０ｍＭＬ−セリン中で、１０μｌの抽出物を２５℃で１０分間アッセイした。タンパク質をアセトンで沈殿させ、シリル化試薬による誘導体化の後、ＧＣ−ＭＳによってＯ−アセチル−セリンを検出した。

ビタミンＢ１２依存性メチオニンシンターゼ活性（ＭｅｔＨ）を測定するために、１００ｍＭリン酸カリウム（ｐＨ７．２）、１ｍＭホモシステイン、０．２５ｍＭメチルテトラヒドロフォレート、５０μＭビタミンＢ１２、２０μＭＳ−アデノシル−メチオニンおよび２５ｍＭＤＴＴ中で、１００μｌの抽出物を３７℃で１０分間アッセイした。タンパク質をアセトンで沈殿させ、シリル化試薬による誘導体化の後、ＧＣ−ＭＳによって生成されたメチオニンを検出した。

表３に見られるように、遺伝子ｃｙｓＥおよびｍｅｔＨの過剰発現により、対応する酵素活性が増大する。故に、これら遺伝子の活性が増大することにより、メチオニン生成が増大する。

発酵条件下でのメチオニン生成の検証
次いで、供給バッチプロトコールを用いて、３００ｍｌの発酵槽（ＤＡＳＧＩＰ）において、製造条件下で目的の代謝産物の実質量を生成する株を試験した。

この目的のため、２．５ｇ／ｌグルコースを含むＬＢ培地内で増殖された８時間培養物を用いて、最小培地ＰＣ１（上記参照のこと）に一晩前培養物を植菌した。１５０ｍｌの最小培地（Ｂ１）を発酵槽に充填し、バイオマス濃度がほぼ０．０９ｇ／ｌになるまで１．５ｍｌの濃縮した前培養物（９ｇ／ｌ〜１２ｇ／ｌ）を植菌した。

培養物の温度は３７℃で一定に保ち、ｐＨは、ＮＨ_４ＯＨ溶液を用いて、６．５〜８、好ましくは６．７の値に永久的に調節した。攪拌速度は、バッチ段階中は６００ｒｐｍに保ち、供給バッチ段階の終わりに最大１０００ｒｐｍまで上げた。溶解酸素濃度は、ガスコントローラーを用いて２０％〜４０％、好ましくは３０％飽和の値で維持した。細胞マスが０．９ｇ／ｌ〜１．２ｇ／ｌの濃度に達したら、０．１ｍｌ／ｈ〜１．５ｍｌ／ｈ、好ましくは０．４３ｍｌ／ｈの初期流速で供給バッチを開始し、最大で０．５ｍｌ／ｈ〜５．８ｍｌ／ｈ、好ましくは１．７ｍｌ／ｈの流速値までＳ字状に流速を上げた（２４ｈ）。正確な供給条件は、以下の式により計算した：

式中、Ｑ（ｔ）は、１５０ｍＬのバッチ容量についての供給流速（ｍＬ／ｈ）であり、
Ｐ１は、０．０２５〜０．３５、好ましくは０．１００であり、
Ｐ２は、０．４００〜５．６００、好ましくは１．６００であり、
Ｐ３は、０．０６８〜０．９５、好ましくは０．２７０であり、
Ｐ４は、１．２５０〜１７．５、好ましくは５．０００である。

この場合、３００ｇ／ｌ〜８００ｇ／ｌ（好ましくは５００ｇ／ｌ）の濃度でグルコースを含有するＦＢ培地を使用した。

バイオマスの濃度が２０ｇ／ｌ〜５０ｇ／ｌ(好ましくは３５ｇ／ｌ、４０〜８０時間)の値に達したら、発酵を停止し、ＨＰＬＣによって細胞外メチオニンおよびイソロイシン濃度を測定した。

表７に見られるように、異種プロモーターの制御下におけるｃｙｓＥ、ｃｙｓＥおよびｍｅｔＨ、ｃｙｓＥ、ｍｅｔＨおよびｍｅｔＦの発現の増強、またはチオ硫酸塩の存在下での株の増殖によりメチオニン生産が著しく増大し得る。イソロイシン生成は、ｃｙｓＥおよび／またはｍｅｔＨの過剰発現により著しく低減される。

３００ｍＬの発酵槽において最も多量のメチオニンを生成した株を、その後、供給バッチプロトコールを用いて２．５ｌの発酵槽（PIERRE GUERIN）中で製造条件下で試験した。

この目的のため、２．５ｇ／ｌのグルコースを含むＬＢ培地において増殖させた８時間培養物を使用して、最小培地ＰＣ１に一晩前培養物を植菌した。発酵槽を６００ｍｌの最小培地（Ｂ２）で充填し、６ｍｌの濃縮した前培養物（９ｇ／ｌ〜１２ｇ／ｌ）を、０．９ｇ／ｌのバイオマスになるまで植菌した。

培養物の温度は３７℃で一定に保ち、ｐＨはＮＨ_４ＯＨ２８％溶液を用いて、６．３〜８、好ましくは６．８の値に永久的に調節した。初期攪拌速度は、バッチ段階中は２００ｒｐｍに保ち、供給バッチ段階中は最大１２００ｒｐｍまで上げた。初期気流速度は、バッチ段階中は４０Ｎｌ／ｈに設定し、供給バッチ段階中は最大２５０Ｎｌ／ｈまで上げた。溶解酸素濃度は、攪拌速度および気流速度を上げることによって、２０％〜４０％飽和、好ましくは３０％の値で維持した。バイオマス濃度が１．２ｇ／ｌ〜１．５ｇ／ｌに達したら、０．５ｍｌ／ｈ〜４ｍｌ／ｈ、好ましくは１．０ｍｌ／ｈの初期流速で供給バッチを開始し、最大で３ｍｌ／ｈ〜３５ｍｌ／ｈ、好ましくは２０．１ｍｌ／ｈの流速値まで幾何級数的に流速を上げた（１５ｈ）。この時点で、流速を１０時間〜４５時間、好ましくは３０時間一定に維持した。供給のために、３００ｇ／ｌ〜８００ｇ／ｌ、好ましくは７５０ｇ／ｌの濃度でグルコースを含有するＦＢタイプＴ２を使用した（表８を参照）。

バイオマスの濃度が４０ｇ／ｌ〜１１０ｇ／ｌ、好ましくは９０ｇ／ｌの値に達したら、発酵を停止し、ＨＰＬＣを用いて細胞外メチオニン濃度を測定した。株ＭＧ１６５５ｍｅｔＡ^＊１１ ΔｍｅｔＪＰｔｒｃ−ｍｅｔＨＰｔｒｃ−ｍｅｔＦ（ｐＭＥ１０１−ｔｈｒＡ^＊１−ｃｙｓＥ）は、これらの条件下で１６９ｍＭのメチオニンを生成した。

Claims

炭素源と硫黄源とを含む適切な培養培地内で微生物を培養し、該培養培地からメチオニンを回収することにより、メチオニンを製造するための方法であって、
・前記微生物において、遺伝子組換えにより、組換え前の該微生物と比べてｃｙｓＥの発現が増大しており、かつ
・前記微生物において、遺伝子組換えにより、組換え前の該微生物と比べてｍｅｔＨの発現が増大しており、かつ
・Ｓ−アデノシルメチオニンおよび／もしくはメチオニンに対するフィードバック感度が低下した酵素をコードするホモセリンスクシニルトランスフェラーゼ（ＭｅｔＡ）対立遺伝子が株に組み込まれており、
前記微生物が大腸菌（E.coli）である、方法。
Ｃ１単位の生成および該Ｃ１単位をホモシステイン上へ転移させる能力に関与する少なくとも１つの遺伝子が、遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べて過剰発現しており、該遺伝子が以下の遺伝子：
・メチオニンシンターゼをコードするｍｅｔＥ；
・５，１０−メチレンテトラヒドロフォレート還元酵素をコードするｍｅｔＦ；
・セリンヒドロキシメチルトランスフェラーゼをコードするｇｌｙＡ；および
・グリシン開裂複合体をコードするｇｃｖＴＨＰ、ｌｐｄ
からなる群から選択される、請求項１に記載の方法。
遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べてｍｅｔＨおよびｍｅｔＦの発現が増大している、請求項２に記載の方法。
ｍｅｔＨ遺伝子およびｍｅｔＦ遺伝子の少なくとも１つが異種プロモーターから発現する、請求項３に記載の方法。
γ脱離活性が低減され、それにより副産物イソロイシンの生成が低下している、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べて、メチオニン生成に関与する更なる遺伝子の発現が増大している、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
メチオニン生成を低減する遺伝子が欠失している、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
ｍｅｔＪ遺伝子によりコードされるメチオニンリプレッサーが欠失または変異している、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
培養培地中の硫黄源が、硫酸塩、チオ硫酸塩、硫化水素、ジチオン酸塩、亜ジチオン酸塩、亜硫酸塩、または異なる供給源の組み合わせである、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
培養培地中の硫黄源が、硫酸塩もしくはチオ硫酸塩、またはこれらの混合物である、請求項９に記載の方法。
メチオニンを単離する工程を含んでなる、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法。
メチオニンの発酵による製造に使用される微生物であって、遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べて、少なくともシステイン生成に関与するｃｙｓＥの発現が増大しており、かつ、Ｃ１単位の生成および該Ｃ１単位をホモシステイン上へ転移させる能力に関与するｍｅｔＨの発現が増大しており、かつ、Ｓ−アデノシルメチオニンおよび／もしくはメチオニンに対するフィードバック感度が低下した酵素をコードするホモセリンスクシニルトランスフェラーゼ（ＭｅｔＡ）対立遺伝子が組み込まれており、該微生物が大腸菌（E.coli）である、微生物。
ｃｙｓＥまたはｍｅｔＨの発現が異種プロモーターによって駆動される、請求項１２に記載の微生物。
Ｃ１単位の生成および該Ｃ１単位をホモシステイン上へ転移させる能力に関与する少なくとも１つの遺伝子が、遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べて過剰発現しており、該遺伝子が以下の遺伝子：
・メチオニンシンターゼをコードするｍｅｔＥ；
・５，１０−メチレンテトラヒドロフォレート還元酵素をコードするｍｅｔＦ；
・セリンヒドロキシメチルトランスフェラーゼをコードするｇｌｙＡ；および
・グリシン開裂複合体をコードするｇｃｖＴＨＰ、ｌｐｄ
からなる群から選択される、請求項１２に記載の微生物。
遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べてｍｅｔＨおよびｍｅｔＦの発現が増大している、請求項１３に記載の微生物。
ｍｅｔＨ遺伝子およびｍｅｔＦ遺伝子の少なくとも１つが異種プロモーターから発現する、請求項１５に記載の微生物。
γ脱離活性が低減され、それにより副産物イソロイシンの生成が低下している、請求項１２〜１６のいずれか一項に記載の微生物。
遺伝子組換えにより、組換え前の微生物と比べて、メチオニン生成に関与する更なる遺伝子の発現が増大している、請求項１２〜１７のいずれか一項に記載の微生物。
メチオニン生成を低減する遺伝子が欠失している、請求項１２〜１８のいずれか一項に記載の微生物。
ｍｅｔＪ遺伝子によりコードされるメチオニンリプレッサーが欠失または変異している、請求項１２〜１９のいずれか一項に記載の微生物。