JP2018194552A - コンパートメント化スクリーニングによる選択 - Google Patents

Abstract

【課題】生化学系の標的成分に結合する、または標的の活性をモジュレートさせる化合物を識別するための方法を提供する。
【解決手段】ａ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数のコピーで示されるように、化合物を標的と一緒にマイクロカプセル中にコンパートメント化するステップと；ｂ）標的に結合する、または標的の活性をモジュレートさせる化合物を識別するステップとを含む方法。
【選択図】図２

Description

本発明は、マイクロカプセルのスクリーニングにより化合物のライブラリから１以上の
化合物を選択する方法に関する。本発明の方法は、特にいずれか所望の薬物標的に対する
潜在的活性について候補薬物などの低分子量化合物の選択に適用できる。

本発明は、生化学的系における標的成分に結合するか、標的の活性をモジュレートする
分子の識別に使用される方法に関する。

過去１０年間に渡り、化合物ライブラリのハイスループットスクリーニング（ＨＴＳ）
は医薬品研究の基礎となる技術となった。ＨＴＳの研究は盛んである。現在の推定では生
物学的スクリーニングおよび前臨床の薬理学的試験のみで医薬品産業の総研究開発（Ｒ＆
Ｄ）経費の〜１４％を計上する(Handen,Summer 2002)。運転コストを低減し、スクリーニ
ングできる化合物および標的の数を増大させる必要性からＨＴＳは近年顕著な進歩を示し
ている。従来の９６穴のプレートは現在では３８４ウェル、１５３６ウェル、さらには３
４５６ウェルのフォーマットに大部分が置き換えられている。これが市販のプレート操作
ロボット工学と組み合わせられて、一日当たり100,000試験以上のスクリーニングを可能
とし、試験の小型化により試験当たりのコストを大幅に削減している。

ＨＴＳは他の数種の開発により補完されている。コンビナトリアル化学は、ＨＴＳのた
めの構造的に関連する多数の化合物を生成するための強力な技術である。現在、コンビナ
トリアル合成は大部分が空間的に分割されたパラレル合成を採用している。合成できる化
合物の数は数百または数千に限定されるが、化合物は数ミリグラムまたは数十ミリグラム
の規模で合成でき、完全な特性決定、さらには精製まで可能にする。より大型のライブラ
リは１ビーズ１化合物ライブラリを生成させるビーズ上のスプリット合成を用いて合成で
きる。この方法が採用されている範囲がはるかに狭小である理由は、一連の制約事項：例
えば固相合成の必要性；最終生成物の特性決定の困難（シェア数と小規模のため）；１回
または２，３回の試験にしか十分でない程度の少量の、ビーズ上の化合物；ヒット化合物
の構造の同定の困難（タグ付けまたはコード方法に依存する場合が多く、合成および分析
の両方を複雑化させる）である。これにもかかわらず、スプリット合成およびシングルビ
ーズ分析はなお信頼できるものである。最近、ミニチュア化されたスクリーニングおよび
シングルビーズ分析における多大な開発が行われた。例えば、印刷技術によりタンパク質
結合試験が、各１ｎｌ容量の10,800化合物スポットを含むスライド上で実施できるように
なった(Hergenrother et al.,2000)。しかしながらコンビケムは限定された数量のリード
化合物しか与えていない。2000年4月の段階で、コンビナトリアル化学のヒストリを有す
る化合物僅か１０種のみが臨床研究に付され、これらの３種を除き全てが（オリゴ）ヌク
レオチドまたはペプチドである(Adang and Hermkens,2001)。実際、過去１０年間のＨＴ
Ｓおよびコンビナトリアル化学における多大なる投資にもかかわらず、年間導入される新
規薬剤の数が一定以上となることはない。

ダイナミックコンビナトリアル化学（ＤＣＣ）もまた可逆的に相互交換可能な成分のセ
ットからダイナミックコンビナトリアルライブラリ（ＤＣＬ）を生成するために使用でき
るが、今日まで生成されスクリーニングされたライブラリのサイズはなおかなり限定され
ている（≦40,000）(Ramstron and Lehn,2002)。

試験のための候補分子のサブセットを識別するためにコンピューター試行を用いて多数
の化合物ベースを検索する仮想スクリーニング（ＶＳ）(Lyne,2002)もまたＨＴＳと統合
されれば極めて有用である。しかしながら、ＶＳおよびＨＴＳの性能を直接比較した試験
は今日までほとんど無く、更なる検証が必要である。

これら全ての開発にもかかわらず、現在のスクリーニングのスループットはなお十分と
は程遠いものである。ヒトゲノムの個体遺伝子の数（〜30,000）および既存の化学を用い
て理論的に得られる独特の化学構造の数の現在の推定値によれば、全ての考えられる治療
標的に対して構造−活性スペースを完全にマッピングするためには多大な数の試験が必要
となることが示唆され得る(Burbaum,1998)。

従って、僅か数フェムトリットルの反応容量を用いながら、極めて低コストで多大な数
量（１０¹⁰）の化合物を迅速にスクリーニングすることを許容する方法の提供は、新薬の
手がかりを得る際に多大な有用性を有するであろう。

Tawfik and Griffiths(1998)、およびPCT国際特許出願第GB98/01889号は、分子レベル
で遺伝子型および表現型に関連するための、マイクロカプセル内のコンパートメント化を
用いるインビトロでの進化のための系について記載している。Tawfik and Griffiths(199
8)、およびPCT国際特許出願第GB98/01889号の幾つかの実施形態では、遺伝子産物の所望
の活性はそれをコードする（そして、同一マイクロカプセル内に存在する）遺伝子エレメ
ントの修飾を生じさせる。修飾された遺伝子エレメントは次に、その後のステップにおい
て選択できる。

・Adang, A. E., and Hermkens, P. H. (2001). The contribution of combinatorial ch
emistry to lead generation: an interim analysis. Curr Med Chem 8, 985-998.
・Anderson, J. E. (1993). Restriction endonucleases and modification methylases.
Curr Op Struct Biol 3, 24-30.
・Becher, P. (1957) Emulsions: theory and practice. Reinhold, New York.
・Benita, S. (ed.). (1996) Microencapsulation: methods and industrial applicatio
ns. Marcel Dekker, New York.
・Bernath, K., Hai, M., Mastrobattista, E., Griffiths, A.D., Magdassi, S. and Ta
wfik, D.S. (2004) In vitro compartmentalization by double emulsions: sorting and
gene enrichment by fluorescence activated cell sorting. Anal Biochem, 325, 151-
157.
・Bru, R. and Walde, P. (1991) Product inhibition of alpha-chymotrypsin in rever
se micelles. Eur J Biochem, 199, 95-103.
・Bru, R. and Walde, P. (1993) Catalytic activity of elastase in reverse micelle
s. Biochem Mol Biol Int, 31, 685-692.
・Burbaum, J. (1998). Miniaturization technologies in HTS: how fast, how small,
how soon? Drug Discov Today 3, 313-322.
・Calvert, P. (2001) Inkjet printing for materials and devices. Chem. Mater., 13
, 3299-3305.
・Chakrabarti, A.C., Breaker, R.R., Joyce, G.F. and Deamer, D.W. (1994) Producti
on of RNA by a polymerase protein encapsulated within phospholipid vesicles. J M
ol Evol, 39, 555-559.
・Chang, T.M. (1987) Recycling of NAD(P) by multienzyme systems immobilized by m
icroencapsulation in artificial cells. Methods Enzymol, 136, 67-82.
・Chang, T.M.S. (1992) Recent advances in artificial cells based on microencapsu
lation. In Donbrow, M. (ed.), Microcapsules and nanoparticles in medicine and ph
armacy. CRC Press, Boca Raton, Florida, pp. 323-339.
・Creagh, A.L., Prausnitz, J.M. and Blanch, H.W. (1993) Structural and catalytic
properties of enzymes in reverse micelles. Enzyme Microb Technol, 15, 383-392.
・Curran, D.P. (1998) Strategy-level separations in organic synthesis: from plan
ning to practice. Angew Chem Int Ed, 37, 1174-1196.
・Czarnik, A. W. (1997). Encoding methods for combinatorial chemistry. Curr Opin
Chem Biol 1, 60-66.
Davis, S. S., and Walker, I. M. (1987). Multiple emulsions as targetable deliver
y systems. Methods in Enzymology 149, 51-64.
・de Gans, B.-J., Duineveld, P.C. and Schubert, U.S. (2004) Inkjet printing of p
olymers: state of the art and future developments. Advanced materials, 16, 203-2
13.
・Dickinson, E. (1994) Emulsions and droplet size control. In Wedlock, D.J. (ed.
), Controlled particle, droplet and bubble formation. Butterworth-Heinemann, Oxf
ord, pp. 191-257.
・Doi, N., and Yanagawa, H. (1999). STABLE: protein-DNA fusion system for screen
ing of combinatorial protein libraries in vitro. FEBS Lett 457, 227-230.
・Doman, T.N., McGovern, S.L., Witherbee, B.J., Kasten, T.P., Kurumbail, R., Sta
llings, W.C., Connolly, D.T. and Shoichet, B.K. (2002) Molecular docking and hig
h-throughput screening for novel inhibitors of protein tyrosine phosphatase-1B.
J Med Chem, 45, 2213-2221.
・Finch, C.A. (1993) Encapsulation and controlled release. Spec. Publ.-R. Soc. C
hem., 138, 35.
・Fornusek & Vetvicka, Crit Rev Ther Drug Carrier Syst. 1986;2(2):137-74
・Fu, A.Y., Chou, H.P., Spence, C., Arnold, F.H. and Quake, S.R. (2002) An integ
rated microfabricated cell sorter. Anal Chem, 74, 2451-2457.
・Fulton, R.J., McDade, R.L., Smith, P.L., Kienker, L.J. and Kettman, J.R., Jr.
(1997) Advanced multiplexed analysis with the FlowMetrix system. Clin Chem, 43,
1749-1756.
・Ghadessy, F.J., Ong, J.L. and Holliger, P. (2001) Directed evolution of polyme
rase function by compartmentalized self- replication. Proc Natl Acad Sci U S A,
98, 4552-4557.
・Gordon, K., and Balasubramanian, S. (1999). Solid phase chemistry - designer l
inkers for combinatorial chemistry. J Chem Technol Biotechnol 74, 835-851.
・Griffiths, A. D., Williams, S. C., Hartley, O., Tomlinson, I. M., Waterhouse,
P., Crosby, W. L., Kontermann, R. E., Jones, P. T., Low, N. M., Allison, T. J.,
and et al. (1994). Isolation of high affinity human antibodies directly from lar
ge synthetic repertoires. Embo J 13, 3245-3260.
・Griffiths, A.D. and Tawfik, D.S. (2003) Directed evolution of an extremely fas
t phosphotriesterase by in vitro compartmentalization. Embo J, 22, 24-35.
・Guixe et al., Ligand-induced conformational transitions in Escherichia coli ph
osphofructokinase 2: evidence for an allosteric site for MgATP2-.
Biochemistry. 1998 Sep 22;37(38):13269-75.
・Haber, J., Maslakiewicz, P., Rodakiewicz, N.J. and Walde, P. (1993) Activity a
nd spectroscopic properties of bovine liver catalase in sodium bis(2-ethylhexyl)
sulfosuccinate/isooctane reverse micelles. Eur J Biochem, 217, 567-573.
・Han, M., Gao, X., Su, J. Z., and Nie, S. (2001). Quantum-dot-tagged microbeads
for multiplexed optical coding of biomolecules. Nat Biotechnol 19, 631-635.
・Han, M., Gao, X., Su, J.Z. and Nie, S. (2001) Quantum-dot-tagged microbeads fo
r multiplexed optical coding of biomolecules. Nat Biotechnol, 19, 631-635.
・Handen, J. S. (Summer 2002). High-throughput screening - challenges for the fu
ture. Drug Discov World, 47-50.
・Harder, K. W., Owen, P., Wong, L. K., Aebersold, R., Clark-Lewis, I., and Jiri
k, F. R. (1994). Characterization and kinetic analysis of the intracellular doma
in of human protein tyrosine phosphatase beta (HPTP beta) using synthetic phosph
opeptides. Biochem J 298 ( Pt 2), 395-401.
・Haugland, R.P., (1996). Handbook of fluorescent probes and research chemicals.
Spence, M.T.Z. Ed
・Heim R, Tsien RY. Engineering green fluorescent protein for improved brightnes
s, longer wavelengths and fluorescence resonance energy transfer. Curr Biol. 199
6 Feb 1;6(2):178-82.
・Hergenrother, P. J., Depew, K. P., and Schreiber, S. L. (2000). Small-molecule
microarrays: covalent attachment and screening of alcohol-containing small mole
cules on glass slides. J Am Chem Soc 122, 7849-7850.
・Hermanson, G.T. (1996) Bioconjugate techniques. Academic Press, San Diego.
・Hildebrand, J.H. and Cochran, D.F.R. (1949) J. Am. Chem. Soc., 71, 22.
・Hochuli, E., Dobeli, H., and Schacher, A. (1987). New metal chelate adsorbent
selective for proteins and peptides containing neighbouring histidine residues.
J Chromatogr 411, 177-184.
・Holmes, C. P., and Jones, D. G. (1995). Reagents for combinatorial crganic syn
thesis: development of a new o-nitrobenzyl photolabile linker for solid phase sy
nthesis. J Org Chem 60, 2318-2319.
・Hudlicky, M. (1992) Chemistry of Organic Fluorine Compounds. Ellis Horwood, Ne
w York.
・Johannsson, A. (1991). Heterogeneous enzyme immunoassays. In Principles and pr
actice of immunoassays, C. P. Price, and D. J. Newman, eds. (New York, Stockton
Press), pp. 295-325.
・Johannsson, A., and Bates, D. L. (1988). Amplification by second enzymes. In E
LISA and other solid phase immunoassays, D. M. Kemeny, and S. J. Challacombe, ed
s. (Chichester, John Wiley), pp. 85-106.
・Johnson, T. O., Ermolieff, J., and Jirousek, M. R. (2002). Protein tyrosine ph
osphatase 1B inhibitors for diabetes. Nature Reviews Drug Discovery 1, 696 -709.
・Keij et al., Cytometry. 1995 Mar 1;19(3):209-16
・Kerker, Cytometry. 1983 Jul;4(1):1-10
・Klug, A. (1995). Gene regulatory proteins and their interaction with DNA. Ann
N Y Acad Sci 758, 143-160.
・Klug, A., and Schwabe, J. W. (1995). Protein motifs 5. Zinc fingers. Faseb J 9
, 597-604.
・Krafft, M.P., Chittofrati, A. and Riess, J.G. (2003) Emulsions and microemulsi
ons with a fluorocarbon phase. Curr. Op. Colloid Interface Sci., 8, 251-258.
・Kumar, A., Kumar, A. and Katiyar, S.S. (1989) Activity and kinetic characteris
tics of glutathione reductase in vitro in reverse micellar waterpool. Biochim Bi
ophys Acta, 996, 1-6.
・Lee, Y.-F., Tawfik, D. S., and Griffiths, A. D. (2002). Investigating the targ
et recognition of DNA cytosine-5 methyltransferase HhaI by library selection usi
ng in vitro compartmentalisation (IVC). Nucleic Acids Res 30, 4937-4944.
・Lim, F. (ed.). (1984) Biomedical applications of microencapsulation. CRC Press
, Boca Raton, Florida.
・Lim, F. and Sun, A.M. (1980) Microencapsulated islets as bioartificial endocri
ne pancreas. Science, 210, 908-910.
・Link, D.R., Anna, S.L., Weitz, D.A. and Stone, H.A. (2004) Geometrically media
ted breakup of drops in microfluidic devices. Phys. Rev. Letts., 92, 054503.
・Lipinski, C.A., Lombardo, F., Dominy, B.W. and Feeney, P.J. (2001) Experimenta
l and computational approaches to estimate solubility and permeability in drug d
iscovery and development settings. Adv Drug Deliv Rev, 46, 3-26.
・Lissant, K.J. (ed.). (1974) Emulsions and emulsion technology. Marcel Dekker,
New York.
・Lissant, K.J. (ed.). (1984) Emulsions and emulsion technology. Marcel Dekker,
New York.
・Lowe, K.C. (2002) Perfluorochemical respiratory gas carriers: benefits to cell
culture systems. J. Fluorine Chem., 118, 19-26.
・Luisi, P.L. and B., S.-H. (1987) Activity and conformation of enzymes in rever
se micellar solutions. Methods Enzymol, 136, 188-216.
・Lyne, P. D. (2002). Structure-based virtual screening: an overview. Drug Disco
v Today 7, 1047-1055.
・Mackenzie and Pinder, Dev Biol Stand. 1986;64:181-93.
・Mahajan NP, Linder K, Berry G, Gordon GW, Heim R, Herman B. Bcl-2 and Bax inte
ractions in mitochondria probed with green fluorescent protein and fluorescence
resonance energy transfer. Nat Biotechnol. 1998 Jun;16(6):547-52.
・Mao, Q. and Walde, P. (1991) Substrate effects on the enzymatic activity of al
pha-chymotrypsin in reverse micelles. Biochem Biophys Res Commun, 178, 1105-1112
.
・Mao, Q., Walde, P. and Luisi, P.L. (1992) Kinetic behaviour of alpha-chymotryp
sin in reverse micelles. A stopped-flow study. Eur J Biochem, 208, 165-170.
・Masui and Kuramitsu, Probing of DNA-binding sites of Escherichia coli RecA pro
tein utilizing 1-anilinonaphthalene-8-sulfonic acid. Biochemistry. 1998 Sep 1;37
(35): 12133 ？ 43
・McDonald, J.C. and Whitesides, G.M. (2002) Poly(dimethylsiloxane) as a materia
l for fabricating microfluidic devices. Acc Chem Res, 35, 491-499.・Menger, F.M.
and Yamada, K. (1979) J. Am. Chem. Soc., 101, 6731-6734.・Meylan, W.M. and Howa
rd, P.H. (1995) Atom/fragment contribution method for estimating octanol-water p
artition coefficients. J Pharm Sci, 84, 83-92.・Miyawaki A, Llopis J, Heim R, Mc
Caffery JM, Adams JA, Ikura M, Tsien RY. Fluorescent indicators for Ca2+ based o
n green fluorescent proteins and calmodulin. Nature. 1997 Aug 28;388(6645):882-7
.
・Mize, P. D., Hoke, R. A., Linn, C. P., Reardon, J. E., and Schulte, T. H. (198
9). Dual-enzyme cascade--an amplified method for the detection of alkaline phosp
hatase. Anal Biochem 179, 229-235.
・Montigiani, S., Neri, G., Neri, P., and Neri, D. (1996). Alanine substitutions
in calmodulin-binding peptides result in unexpected affinity enhancement. J Mol
Biol 258, 6-13.
・New, R.R.C. (ed.). (1990) Liposomes: a practical approach. Oxford University P
ress, Oxford.
・Norman, Med Phys. 1980 Nov-Dec;7(6):609-15.
・Oberholzer, T., Albrizio, M. and Luisi, P.L. (1995) Polymerase chain reaction
in liposomes. Chem Biol, 2, 677-682.
・Oberholzer, T., Wick, R., Luisi, P.L. and Biebricher, C.K. (1995) Enzymatic RN
A replication in self-reproducing vesicles: an approach to a minimal cell. Bioch
em Biophys Res Commun, 207, 250-257.
・Obukowicz, M.G., Turner, M.A., Wong, E.Y. and Tacon, W.C. (1988) Secretion and
export of IGF-1 in Escherichia coli strain JM101. Mol Gen Genet, 215, 19-25.
・Perelson, A. S., and Oster, G. F. (1979). Theoretical studies of clonal select
ion: minimal antibody repertoire size and reliability of self-non-self discrimin
ation. J Theor Biol 81, 645-670.
・Perez, G.M., Sanchez, F.A. and Garcia, C.F. (1992) Application of active-phase
plot to the kinetic analysis of lipoxygenase in reverse micelles. Biochem J.
・Pirrung, M. C., and Huang, C. Y. (1996). A general method for the spatially de
fined immobilization of biomolecules on glass surfaces using "caged" biotin. Bio
conjug Chem 7, 317-321.
・Qi and Grabowski, Acid beta-glucosidase: intrinsic fluorescence and conformati
onal changes induced by phospholipids and saposin C. Biochemistry. 1998 Aug 18;3
7(33):11544-54
・Ramstrom, O., and Lehn, J. M. (2002). Drug discovery by dynamic combinatorial
libraries. Nat Rev Drug Discov 1, 26-36.
・Riess, J.G. (2002) Fluorous micro- and nanophases with a biomedical perspectiv
e. Tetrahedron, 58, 4113-4131.
・Rolland, J Immunol Methods. 1985 Jan 21;76(1):1-10
・Sadtler, V.M., Krafft, M.P. and Riess, J.G. (1996) Achieving stable, reverse w
ater-in-fluorocarbon emulsions. Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 35, 1976-1978.
・Sambrook, J., and Russell, D. W., eds. (2001). Molecular cloning: a laboratory
manual (New York, Cold Spring Harbor Laboratory Press).
・Savage, M. D., Mattson, G., Desai, S., Nielander, G. W., Morgensen, S., and Co
nklin, E. J. (1994). Avidin-biotin chemistry: a handbook, 2 edn (Rockford, Pierc
e Chemical Company).
・Schick, M.J. (1966) Nonionic surfactants. Marcel Dekker, New York.
・Scott, R.L. (1948) J. Am. Chem. Soc., 70, 4090.
・Sepp, A., Tawfik, D. S., and Griffiths, A. D. (2002). Microbead display by in
vitro compartmentalisation: selection for binding using flow cytometry. FEBS Let
ters 532, 455-458.
・Shapiro, H. M. (1995). Practical Flow Cytometry, 3 edn (New York, Wiley-Liss).
・Sherman, P. (1968) Emulsion science. Academic Press, London.
・Song, H. and Ismagilov, R.F. (2003) Millisecond kinetics on a microfluidic chi
p using nanoliters of reagents. J Am Chem Soc, 125, 14613-14619.
・Song, H., Tice, J.D. and Ismagilov, R.F. (2003) A microfluidic system for cont
rolling reaction networks in time. Angew. Chem. Int. Ed. Engl., 42, 767-772.
・Stofko, H. R., Carr, D. W., and Scott, J. D. (1992). A single step purificatio
n for recombinant proteins. Characterization of a microtubule associated protein
(MAP 2) fragment which associates with the type II cAMP-dependent protein kinas
e. Febs Lett 302, 274-278.
・Studer, A., Hadida, S., Ferritto, R., Kim, S.Y., Jeger, P., Wipf, P. and Curra
n, D.P. (1997) Fluorous synthesis: a fluorous-phase strategy for improving separ
ation efficiency in organic synthesis. Science, 275, 823-826.
・Sun, A.M., Vasek, I. and Tai, I. (1992) Microencapsulation of living cells and
tissues. In Donbrow, M. (ed.), Microencapsulation and nanoparticles in medicine
and pharmacy. CRC Press, Boca Raton, Florida, pp. 315-322.
・Sundberg, S. A., Barrett, R. W., Pirrung, M., Lu, A. L., Kiangsoontra, B., and
Holmes, C. P. (1995). Spatially-addressable immobilisation of macromolecules on
solid supports. J Am Chem Soc 117, 12050-12057.
・Tawfik, D. S., and Griffiths, A. D. (1998). Man-made cell-like compartments fo
r molecular evolution. Nat Biotechnol 16, 652-656.
・Thorsen, T., R.W., R., Arnold, F.H. and Quake, S.R. (2001) Dynamic pattern for
mation in a vesicle-generating microfluidic device. Phys. Rev. Letts., 86, 4163-
4166.
・Tripet, B., Yu, L., Bautista, D. L., Wong, W. Y., Irvin, R. T., and Hodges, R.
S. (1996). Engineering a de novo-designed coiled-coil heterodimerization domain
off the rapid detection, purification and characterization of recombinantly exp
ressed peptides and proteins. Protein Eng 9, 1029-1042.
・Umbanhowar, P.B., Prasad, V. and Weitz, D.A. (2000) Monodisperse emulsions gen
erated via drop break off in a coflowing steam. Langmuir, 16, 347-351.
・van Hal, D.A., Bouwstra, J.A. and Junginger, H.E. (1996) Nonionic surfactant v
esicles containing estradiol for topical application. In Benita, S. (ed.), Micro
encapsulation: methods and industrial applications. Marcel Dekker, New York, pp.
329-347.
・Voss EW Jr. Kinetic measurements of molecular interactions by spectrofluoromet
ry. J Mol Recognit. 1993 Jun;6(2):51-8
・Walde, P., Goto, A., Monnard, P.-A., Wessicken, M. and Luisi, P.L. (1994) Opar
in's reactions revisited: enzymatic synthesis of poly(adenylic acid) in micelles
and self-reproducing vesicles. J. Am. Chem. Soc., 116, 7541-7547.
・Walde, P., Han, D. and Luisi, P.L. (1993) Spectroscopic and kinetic studies of
lipases solubilized in reverse micelles. Biochemistry, 32, 4029-4034.
・Walde, P., Peng, Q., Fadnavis, N.W., Battistel, E. and Luisi, P.L. (1988) Stru
cture and activity of trypsin in reverse micelles. Eur J Biochem, 173, 401-409.
・Whateley, T.L. (1996) Microcapsules: preparation by interfacial polymerisation
and interfacial complexation and their applications. In Benita, S. (ed.), Micro
encapsulation: methods and industrial applications. Marcel Dekker, New York, pp.
349-375.
・Wick, R. and Luisi, P.L. (1996) Enzyme-containing liposomes can endogenously p
roduce membrane-constituting lipids. Chem Biol, 3, 277-285.
・Zhang, Z. Y., Thieme-Sefler, A. M., Maclean, D., McNamara, D. J., Dobrusin, E.
M., Sawyer, T. K., and Dixon, J. E. (1993). Substrate specificity of the protei
n tyrosine phosphatases. Proc Natl Acad Sci U S A 90, 4446-4450.

我々は、Griffiths & Tawfik(1998)の記載に基づくコンパートメント化されたマイクロ
カプセル系を用いて、遺伝子エレメントによってコードされない化合物を選択するための
方法を開発した。本発明による新規方法は、現代的ＨＴＳアプローチと適合する形で、低
コストで標的に対する活性を有する化合物の迅速なハイスループットスクリーニングを可
能とする。

第１の態様では、レパートリーの化合物中において、所望の活性を有する１以上の化合
物を識別する方法であって、
ａ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数の
コピーで示されるように、化合物をマイクロカプセルにコンパートメント化するステップ
と；
ｂ）所望の活性を有する化合物を識別するステップと
を含む方法が提供される。

好ましくは、所望の活性は標的の結合活性および活性のモジュレーションからなる群よ
り選択される。標的は、好ましくは化合物と一緒にマイクロカプセル中にコンパートメン
ト化され、標的および化合物を一緒に結合するマイクロカプセル中において標的上の化合
物の活性を測定することを可能とする。

好ましくは、任意の１つのマイクロカプセル中に存在するレパートリーのサブセットは
単一化合物である。各マイクロカプセルは、有益には単一化合物の複数のコピーであるレ
パートリーのサブセットの複数分子を含有する。

１以上の化合物は、本発明にかかるスクリーニングするステップにより、化合物を含有
するマイクロカプセルの変化についてスクリーニングできる。好ましい実施形態では、マ
イクロカプセルはそれらの光学特性を変化させるなどの化合物の作用によって修飾される
。

マイクロカプセルの光学特性の変化は、標的に結合したときの化合物の光学特性の変化
または化合物が結合したときの標的の光学特性の変化に起因してもよい。さらに、マイク
ロカプセルの光学特性の変化は、結合したときの標的および化合物両方の光学特性の変化
に起因してもよい。

マイクロカプセルの光学特性の変化は、化合物による標的の活性のモジュレーションに
起因する可能性がある。化合物は、標的の活性を活性化または阻害することがある。例え
ば、標的が酵素である場合、基質と標的によって触媒された反応の生成物とは相違する光
学特性を有する可能性がある。好ましくは、基質および生成物は相違する蛍光特性を有す
る。

マイクロカプセル内で検出された変化は、化合物の直接的作用によって、または一連の
反応（そのうちの１つ以上が所望の活性を有する化合物に関連する）により検出される変
化が引き起こされる間接的作用によって引き起こされる可能性があると理解されたい。

マイクロカプセルの１以上の化合物は、質量分析法、化学タグ付け法または光学タグ付
け法を含む、当業者によく知られている様々な技術を用いて識別できる。好ましくは、化
合物は、マイクロカプセルおよびその中に含有される化合物の識別を可能とする光学標識
マイクロカプセル内に含有される。

好ましくは、マイクロカプセルは、それらの蛍光の変化を検出することによって分析さ
れる。例えば、マイクロカプセルはフローサイトメトリーによって分析することができ、
そして蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）を用いて任意に分類できる。標的および生成
物の相違する蛍光特性は、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）に起因してもよい。

また別の実施形態では、マイクロカプセルの内部環境は１以上の試薬を油相へ添加する
ことによって修飾できる。これは、必要であれば、反応中に試薬がマイクロカプセル内に
拡散するのを可能とする。

本発明の好ましい形態によると、１以上の化合物は、化合物もしくはその誘導体の活性
（全体としてマイクロカプセルを検出可能にする）にしたがってスクリーニングできる。
したがって、本発明は、所望の活性を有する化合物が、マイクロカプセルの変化、または
マイクロカプセル内の１つ以上の分子の修飾（これらが、化合物を含有するマイクロカプ
セルの識別を可能とする）を誘導する方法を提供する。このため、この実施形態では、マ
イクロカプセルは、（ａ）その中に含有された１以上の化合物の活性にしたがって相互か
ら物理的に分類され、分類されたマイクロカプセルの内容物が分析され、それらが含有す
る１以上の化合物の同一性が決定される；あるいは（ｂ）分類せずに直接的に分析されて
、マイクロカプセルが含有する１以上の化合物の同一性が決定される。

好ましくは、マイクロカプセル化は油中水型エマルジョンを形成することによって達成
される。

レパートリーのサブセットの複数のコピーでのコンパートメント化は多数の方法で達成
できる。例えば、化合物をビーズに結合させ、各コンパートメント内に実質的に単一ビー
ズだけが含まれるようにエマルジョンを形成することができる。上記のステップ（ａ）は
、
ａ）任意の１つのマイクロビーズ上でレパートリーのサブセットのみが示されるように
、化合物のレパートリーをマイクロビーズ上に結合させるステップと；
ｂ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットが複数のコピ
ーで示されるように、マイクロビーズをマイクロカプセルにコンパートメント化するステ
ップと
を含むように修飾される。

また別の態様では、レパートリーの化合物中の、所望の活性を有する１以上の化合物を
識別する方法であって、
４．任意の１つのマイクロビーズ上でレパートリーのサブセットのみが示されるように
、レパートリーの化合物をマイクロビーズ上に結合させるステップと；
５．マイクロビーズをマイクロカプセルにコンパートメント化するステップと；
６．任意選択的に、マイクロビーズから化合物を放出させるステップと；
７．所望の活性を有する化合物を識別するステップと
を含む方法が提供される。

好ましくは、いずれか１つのマイクロビーズ上に存在するレパートリーのサブセットは
単一化合物である。好ましくは、各マイクロビーズには単一化合物の複数の分子が結合し
ている。

好ましくは、化合物は切断可能なリンカー、例えば所望であればマイクロビーズからの
化合物の放出を可能とする光切断可能なリンカーによってマイクロビーズへ結合させられ
る。

化合物は、本発明によって、化合物を含有するマイクロカプセルの変化、またはそれに
化合物が結合しているマイクロビーズ内もしくはマイクロビーズ上の変化のいずれかにつ
いてスクリーニングするステップによってスクリーニングできる。

ビーズ上の化合物は、質量分析法、化学タグ付け法または光学タグ付け法を含む、当業
者によく知られている様々な技術を用いて識別できる。好ましくは、化合物は、ビーズお
よびステップ（ｄ）においてそれに結合した化合物の識別を可能とするために光学タグ付
けマイクロビーズに結合させられる。

レパートリーは、さらに単一化合物の複数のコピーのカプセル化を達成するために様々
な方法でエマルジョン化することもできる。

例えば、各化合物の水溶液を油中水型エマルジョンのマイクロカプセル中にコンパート
メント化し、次に様々な化合物を含有するエマルジョンのアリコートを混合することがで
きる。マイクロカプセルは通常はさらに標的を含有でき、標的の活性はマイクロカプセル
を低温に維持することによって抑制できる。

さらにまた別の実施形態では、各化合物の水溶液の少量区分を、機械的エネルギーを与
えながら油相（好ましくは界面活性剤および／または他の安定化分子を含有する）内に投
入(deposit)することにより、各化合物を複数の水性マイクロカプセル（各々が（大部分
において）１種類の化合物であるがその複数のコピーを含む）内に分散させることができ
る。好ましくは、化合物はインクジェット印刷技術(Calvert,2001;de Gans et al.,2004)
を用いながら、より好ましくは圧電気ドロップオンデマンド（ＤＯＤ）インクジェット印
刷技術により産生された液滴の形態で油相内に投入できる。インクジェット印刷技術もま
たエマルジョンの形成の直前に、試薬（例えば標的活性を試験するための化合物、標的お
よび試薬）を混合するために使用できる。好ましくは、複数の化合物をコンビナトリアル
な様式において複数の標的と混合できる。このアプローチによると、水性液滴から油相内
でインサイチューで個々のエマルジョン（後に混合される）を形成して、類似の結果が達
成される。

即ち、上記ステップ（ａ）は、個々の化合物を含む個別のエマルジョンコンパートメン
トを形成するステップと、エマルジョンコンパートメントを混合して乳化された化合物の
レパートリーを形成するステップであって、任意の１つのマイクロカプセルにおいて、そ
のレパートリーのサブセットが複数のコピーで示されるようにする、ステップとを含むよ
うに改変することができ。

更にまた化合物ライブラリは微小流体手法を用いて作成した高度に単分散のマイクロカ
プセル内にコンパートメント化することができる。例えば、各化合物の少量分を油の共流
動ストリーム内での液滴の破壊により生成された油中水エマルジョン中の水性マイクロカ
プセル１つ以上（多分散度３％未満）内にコンパートメント化できる(Umbanhowar et al.
,2000)。好ましくは、その後、水性マイクロカプセルを微小流体チャンネル内の油のスト
リーム内の層流により輸送する(Thorsen et al.,2001)。単一の化合物を含有するこれら
のマイクロカプセルは、任意選択的に微小流体を用いてより小さいマイクロカプセル２つ
以上に分割することができる(Link et al.,2004;Song et al.,2003)。単一の化合物を含
有するマイクロカプセルは、任意選択的に、標的を含有する他のマイクロカプセル(Song
et al.,2003)と融合できる。標的を含有する単一のマイクロカプセルは、任意選択的に、
より小型のマイクロカプセル２つ以上に分割し、これをその後異なる化合物、または異な
る濃度の化合物を含有するマイクロカプセルと融合することができる。好ましくは、化合
物および標的をマイクロカプセル融合により混合した後に、標的の活性を試験するために
必要なもの（例えば標的が酵素である場合は標的のための基質）を送達する第２のマイク
ロカプセル融合を行う。これにより化合物が標的に結合する時間が与えられる。マイクロ
カプセルは微小流体装置を用いて分析、および任意選択的に分類することができる(Fu et
al.,2002)。

本発明の好ましい態様によれば、化合物のスクリーニングは例えば下記の通り実施する
ことができる。

（Ｉ）第１の実施形態において、マイクロカプセルは、全体としてマイクロカプセルを
検出可能とする化合物またはその誘導体の活性に従ってスクリーニングされる。従って、
本発明は所望の活性を有する化合物が、化合物を含有するマイクロカプセルを識別可能と
する、マイクロカプセルの変化またはマイクロカプセル内の分子１つ以上の修飾をもたら
す方法を提供する。従ってこの実施形態において、マイクロカプセルは、（ａ）そこに含
有される化合物の活性に従って相互に物理的に分類され、分類されたマイクロカプセルの
内容物は任意選択的に１つ以上の共通のコンパートメント内にプールされ、マイクロカプ
セルの内容物を分析することにより化合物の内容を決定するか；または（ｂ）分類するこ
となく直接分析することによりマイクロカプセルが含有していた化合物の内容を決定する
かのいずれかである。マイクロカプセルがマイクロビーズを含有する場合は、マイクロビ
ーズを分析することによりそれらをコーティングしている化合物を決定できる。

（II）第２の実施形態において、マイクロビーズはコンパートメント１つ以上内にマイ
クロカプセルをプールした後に分析する。この実施形態においては、所望の活性を有する
化合物はそれを担持している（そして同じマイクロカプセル内に存在している）マイクロ
ビーズを、後のステップにおいて識別可能とするような方法で修飾する。反応を停止し、
後にマイクロカプセルを破壊して個々のマイクロカプセルの内容物全てがプールされるよ
うにする。修飾されたマイクロカプセルは識別され、（ａ）マイクロビーズ上にコーティ
ングされた化合物の活性に従って相互に物理的に分類され、分類されたマイクロビーズを
分析することによりそれらをコーティングする／していた化合物の内容を決定するか；ま
たは（ｂ）分類することなく直接分析することによりマイクロビーズをコーティングする
／していた化合物の内容を決定するかのいずれかである。当然ながら、マイクロビーズの
修飾は、それが化合物の直接の作用により誘発されるという点において直接のものである
か、または、所望の活性を有する化合物を１つ以上が使用している一連の反応によりマイ
クロビーズの修飾がもたらされる間接的なものであってよい。好ましくは、標的をマイク
ロビーズに結合されており、リガンドであり、マイクロカプセル内の化合物は該リガンド
に直接または間接的に結合することによりマイクロビーズの単離を可能とする。別の形態
においては、標的に対する基質はマイクロビーズに結合されており、マイクロカプセル内
の化合物の活性はマイクロビーズの部分として残存し、その単離を可能とする生成物への
該基質の変換を直接または間接的にもたらす。あるいは、化合物の活性は生成物への該基
質の変換を防止または抑制してよい。更にまた、マイクロカプセル内での化合物の活性の
生成物は、後にマイクロビーズと複合体化してその識別を可能とする生成物の生成を直接
または間接的にもたらす。

(III)第３の実施形態においては、共通のコンパートメント１つ以上の中にマイクロカ
プセルをプールした後にマイクロビーズを分析する。本実施形態においては、所望の活性
を有する化合物は、化合物を含有するマイクロカプセルおよびそれを担持するマイクロビ
ーズの変化をもたらす。この変化は、検出されれば、コンパートメント内のマイクロビー
ズの修飾をトリガーする。反応を停止し、後にマイクロカプセルを破壊することにより個
々のマイクロカプセルの内容物を全てプールする。修飾されたマイクロビーズを識別し、
（ａ）マイクロビーズ上にコーティングされた化合物の活性に従って相互に物理的に分類
し、分類されたマイクロビーズを分析してそれらをコーティングする／していた化合物の
内容を決定するか；または（ｂ）分類することなく直接分析することによりマイクロビー
ズをコーティングする／していた化合物の内容を決定するかのいずれかである。

マイクロカプセルまたはマイクロビーズはその光学特性を変化させるように化合物の作
用により修飾してよい。例えば、マイクロビーズの修飾はこれを更にマイクロカプセル外
部で修飾可能とし、これによりその光学特性の変化を誘導できる。

別の実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化は
標的への特徴的な光学特性を有する化合物の結合によるものである。

更に、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化は化合物による特徴的
な光学特性を有する標的の結合によるものである。

マイクロカプセルもしくはマイクロビーズの光学特性の変化は、標的に結合したときの
化合物の光学特性の変化、または化合物が結合したときの標的の光学特性の変化に起因し
てもよい。さらに、マイクロカプセルもしくはマイクロビーズの光学特性の変化は、結合
したときの標的および化合物両方の光学特性の変化に起因してもよい。

マイクロカプセルの光学特性の変化は化合物による標的の活性のモジュレートによるも
のであってよい。化合物は標的の活性を活性化または抑制してよい。例えば標的が酵素で
ある場合は、基質および標的により触媒される反応の生成物は異なる光学特性を有するこ
とができる。好ましくは、基質および生成物は異なる蛍光特性を有する。マイクロカプセ
ルがマイクロビーズを含む場合は、基質および生成物の両方が同様の光学特性を有するこ
とができるが、ただし反応生成物のみがマイクロビーズと結合または反応するが基質はそ
れをせず、これにより、マイクロビーズの光学特性が変化する。

別の態様においては、別の試薬が、マイクロカプセルまたはマイクロビーズに結合する
かこれに含まれている生成物（基質ではない）に特異的に結合するか、または特異的に反
応することにより、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性を改変する。

好ましくは、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは化合物の活性により直接または
間接的に修飾され、更にチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ（商標）；ＮＥＮ）により修飾さ
れ、その結果として直接または間接的に該マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学
特性の変化がもたらされ、これによりその分離が可能となる。

化合物がビーズに結合する場合は、化合物がマイクロビーズ上にコーティングされる密
度がマイクロカプセルの大きさと組み合わせられてマイクロカプセル内の化合物の濃度を
決定する。高い化合物のコーティング密度および小型のマイクロカプセルは共に、より高
い化合物濃度をもたらし、これは標的に対する親和性が低い分子の選択に好ましいかもし
れない。逆に、低い化合物コーティング密度および大型のマイクロカプセルは共により低
い化合物濃度をもたらし、これは標的に対する親和性が高い分子の選択に好ましいかもし
れない。

マイクロビーズは非磁性、磁性または常磁性であることができる。

好ましくは、マイクロカプセルまたはマイクロビーズはその蛍光の変化の検出により分
析する。例えば、マイクロビーズはフローサイトメトリーで分析し、任意選択的に蛍光活
性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて分類できる。標的および生成物の異なる蛍光特性
は蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）によるものであることができる。

本発明はまた本発明により識別される物を提供する。この点に関し、「物」とは本発明
により選択可能である任意の化合物を指す。

本発明のその他の実施形態は以下の詳細な説明および添付する請求項に記載する通りで
ある。

［定義］
「マイクロカプセル」という用語は本明細書においては、当分野で通常用いられており、
さらに後述する意味に従う。しかしながら本質的にはマイクロカプセルは、所望の活性を
有する分子の識別を可能にする本明細書に記載の分子機序における成分の交換をその輪郭
となる境界が制限している人工のコンパートメントである。輪郭となる境界は好ましくは
マイクロカプセルの内容物を完全に封入するものである。好ましくは、本発明の方法にお
いて使用するマイクロカプセルは極めて多数量で製造可能であり、これにより化合物のラ
イブラリをコンパートメント化できる。任意選択的に、化合物をマイクロビーズに結合で
きる。本明細書において使用されるマイクロカプセルはその内部において混合および分類
が可能であり、これにより本発明の方法の高スループット能を促進する。固体表面上の液
滴およびマルチウェルプレートのアレイは本明細書においてはマイクロカプセルとは定義
しない。

「マイクロビーズ」という用語は本明細書においては、当分野で通常用いられており、
さらに後述する意味に従う。マイクロビーズはまた、マイクロスフェア、ラテックス粒子
、ビーズまたはミニビーズとして当業者に知られているものであり、２０ｎｍ〜１ｍｍの
直径のものが入手可能であり、種々の材料、例えばシリカおよび種々の重合体、共重合体
および３元重合体から製造できる。高度に均一の誘導体化された(derivatized)および誘
導体化されていない非磁性および常磁性のマイクロビーズ（ビーズ）は多くの販売元より
入手できる(例えばSigma、Bangs Laboratories、LuminexおよびMolecular Probes)(Fornu
sek and Vetvicka,1986)。

マイクロビーズは、マイクロカプセルへ分配することにより本発明に従って「コンパー
トメント化」できる。例えば、好ましい態様において、マイクロビーズを水／油混合物中
に入れ、乳化して、本発明のマイクロカプセルを含む油中水エマルジョンを形成できる。
マイクロビーズの濃度は、各マイクロカプセル内に平均して単一のマイクロビーズが出現
するように調整することができる。

「化合物」という用語は本明細書においては当分野で通常用いられている意味に従う。
化合物という用語は、その最も広い意味において、即ち、所定の割合で元素２つ以上を含
む物質（分子および超分子複合体(supramolecular complex)を含む）として使用される。
この定義には医薬品の大部分を構成する小分子（典型的には＜５００ダルトン）も包含さ
れる。しかしながら、定義はまたより大型の分子、例えば重合体、例えばポリペプチド、
核酸および炭水化物およびその超分子複合体も包含する。

化合物の「レパートリー」とは多様な化合物の群であり、これはまた化合物のライブラ
リとも称することができる。化合物のレパートリーは当分野で知られた任意の手段、例え
ばコンビナトリアル化学、化合物進化により生成させるか（本明細書と同一日に出願され
た同時係属の「Compartinentalised Combinatorial Chemistry」と題する英国特許出願の
方法などによる）、または、Sigma Aldrich,Discovery Partners International,Maybrid
geおよびTriposのような市販元より購入してよい。レパートリーは、好ましくは少なくと
も１０²、１０³、１０⁴、１０⁵、１０⁶、１０⁷、１０⁸、１０⁹、１０¹⁰、１０¹¹以上の異
なる化合物を含み、これは構造または機能において関係していても無関係でもよい。

レパートリーの「サブセット」はその一部であり、これは単一化合物または関連する、
もしくは関連しない構造を有する一群の化合物であってよい。好ましくは、このサブセッ
トは単一化合物である。好ましくは、各化合物の複数のコピーが１つのマイクロカプセル
内に封入される。マイクロビーズに結合させることのできるレパートリーのサブセットは
、好ましくは各化合物の複数のコピーで結合させられる；例えば、各マイクロビーズがた
った１つの化合物に結合している場合は、その化合物の複数の分子がマイクロビーズへ結
合させられる。マイクロビーズへ結合した化合物の量がマイクロカプセル内の化合物の濃
度を決定するであろう。

マイクロビーズへの化合物の結合を行うリンカーの切断により化合物をマイクロビーズ
から「放出」させることができる。マイクロビーズからの化合物の放出により化合物はよ
り自由にマイクロカプセルの他の内容物と相互作用ができるようになり、その内部の反応
に関与できるようになり、任意選択的に他の試薬と組み合わさって新しい化合物、複合体
、分子または超分子複合体を形成できるようになる。リンカーの切断は任意の手段により
実施でき、マイクロカプセルを用いることなく実施できる光化学的切断が好ましい。光化
学的に切断できるリンカーは当分野で知られており(例えばGordon and Balasubramanian,
1999参照)、さらに後述する通りである。

本明細書においては、「標的(target)」とは任意の化合物、分子または超分子複合体で
ある。典型的な標的は医療上の意味を有する標的を包含し、例えば薬剤標的、例えば受容
体、例えばＧタンパク質結合受容体およびホルモン受容体；シグナリング経路に関与する
転写因子、プロテインキナーゼおよびホスファターゼ；微生物に特異的な遺伝子産物、例
えば細胞壁成分、レプリカーゼおよび他の酵素；工業的に関連のある標的、例えば食品産
業において使用される酵素、研究または生産目的の試薬等を包含する。

「所望の活性」とは、本明細書においては、標的のいずれかの活性、または標的によっ
て影響を及ぼされる分子の活性のモジュレーションであり、これは本明細書において試験
する化合物により直接または間接的にモジュレートすることができる。
標的の活性は、任意の測定可能な生物学的または化学的な活性、例えば結合活性、酵素
活性、第３の酵素または他の分子に対する活性化または抑制の活性、疾患を誘発するか代
謝または他の機能に影響する能力等であってよい。本明細書において言及する活性化およ
び抑制とは、所望の活性を１．５倍、２倍、３倍、４倍、５倍、１０倍、１００倍以上の
増大または低減を指す。モジュレーションが不活性化である場合は、不活性化は実質的に
完全な不活性化である。更にまた所望の活性は純粋に結合活性であってよく、これには結
合する標的の活性のモジュレーションが関与してもしなくてもよい。

本明細書において「低分子量」または「小分子」と定義される化合物は医薬品分野にお
いて「小分子」と一般的に称される分子である。このような化合物はポリペプチドおよび
他の大型分子複合体よりも小型であり、患者および他の対象に容易に投与でき、消化(ass
imilate)されるものである。小分子薬剤は経口投与または筋肉内注射用に好適に製剤でき
る。例えば小分子は２０００ダルトン以下；好ましくは１０００ダルトン以下；好ましく
は２５０〜７５０ダルトン；およびより好ましくは５００ダルトン未満の分子量を有する
ことができる。

「選択可能な変化(selectable change)」とは、測定可能であり、当該変化を引き起こ
す化合物を識別または単離するために利用可能である任意の変化である。選択は、（任意
選択的に他の試薬と複合体化された際に）、マイクロカプセル、マイクロビーズまたは化
合物自体のレベルで起こってよい。特に好ましい実施形態は光学的検出であり、その場合
、選択可能な変化は光学特性の変化であり、これは例えばＦＡＣＳ装置において検出およ
び利用でき、これにより所望の変化を表すマイクロカプセルまたはマイクロビーズを分離
できる。

本明細書においては光学特性の変化は電磁放射の吸収または放射の任意の変化、例えば
吸光度、ルミネセンス、燐光または蛍光の変化を指す。このような特性の全てが「光学的
」という用語に包含される。マイクロカプセルまたはマイクロビーズは、例えばルミネセ
ンス、蛍光または燐光活性化分類により識別され、任意選択的に分類される。好ましい実
施形態においては、フローサイトメトリーを用いてマイクロカプセルまたはマイクロビー
ズを識別し、任意選択的に分類する。種々の光学特性を分析のためおよび分類をトリガー
するために使用でき、例えば光散乱(Kerker,1983)および蛍光分極(Rolland et al.,1985)
が挙げられる。高度に好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビ
ーズは、蛍光活性化細胞ソーター（ＦＡＣＳ）を用いて分析され、任意選択的に分類され
る(Norman,1980;Mackenzie and Pinder,1986)。

マイクロカプセル中またはビーズ上の化合物は当業者がよく知る種々の手法、例えば質
量スペクトル分析、化学的タグ付けまたは光学的タグ付けにより識別できる。

［一般的方法］
特段の記載が無い限り、本明細書において使用する全ての技術的および専門的な用語は
本分野（例えば細胞培養、分子遺伝学、核酸化学、ハイブリダイゼーション技術および生
化学）の当業者が一般的に理解している意味と同様の意味を有する。分子、遺伝および生
化学的方法（一般的には、引用により本明細書に組み込まれるSambrook et al.,Molecula
r Cloning:A Laboratory Manual,2d ed(1989)Cold Spring Harbor Laboratory Press,Col
d Spring Harbor,N.Y.およびAusbel et al.,Short Protocols in Molecular Biology(199
9)4th Ed,John Wiley&Sons,Inc.参照）および化学的方法には、標準的な技術が使用され
る。更にまた、Harlow&Lane,A Laboratory Manual Cold Spring Harbor,N.Y.も標準的な
免疫学的技術について参照される。

〔（Ａ）一般的説明〕
本発明のマイクロカプセルは、本発明が機能するために適切な物理学的特性を必要とす
る。

まず、複数のマイクロカプセル間で化合物および標的が拡散しないようにするためには
、各マイクロカプセルの内容物を周囲のマイクロカプセルの内容物から隔離することによ
り、実験期間中を通じてマイクロカプセル間での化合物および標的の交換を皆無または極
僅かとしなければならない。しかし、マイクロカプセルの透過性は、所望であれば試薬が
マイクロカプセル内および／または外へ拡散するのを許容するように調整できる。

第２に、本発明の方法はマイクロカプセル１つにつき相違する化合物が限定された数し
か存在しないことを必要とする。化合物がビーズに付着している場合は、本発明の方法は
マイクロカプセル１つにつき限定された数のビーズしか存在しないことを必要とする。

第２に本発明の方法では、マイクロカプセル当たり限られた数量のみビーズが存在しな
ければならない。これにより化合物および標的が他のビーズから隔離されることになる。

第３に、好ましくは、マイクロカプセルの形成および組成は標的の活性を低減させない
。

結果として、好ましくは、使用する任意のマイクロカプセル化系はこれらの３つの条件
を満足している。適切な系は当業者に明らかなとおり、本発明の各用途における条件の厳
密な性質により変動する。

広範な種類のマイクロカプセル化の操作法(Benita,1996参照)が使用可能であり、本発
明に従って使用するマイクロカプセルを産生するために使用してよい。実際、２００を超
えるマイクロカプセル化方法が文献に記載されている(Finch,1993)。

これらには膜エンベロープ水性ベシクル、例えば脂質ベシクル（リポソーム）(New,199
0)および非イオン系界面活性剤ベシクル(van Hal et al.,1996)が包含される。これらは
非共有結合的に組み立てられた分子の単一または複数の二重層(bilayer)の閉じた膜カプ
セルであり、各二重層は水性のコンパートメントによりその近隣から分離されている。リ
ポソームの場合は、膜は脂質分子からなり；これらは通常はリン脂質であるが、コレステ
ロールのようなステロールも膜内に取り込んでよい(New,1990)。種々の酵素触媒性化学的
反応、例えばＲＮＡおよびＤＮＡ重合をリポソーム内で実施できる(Chakrabarti et al.,
1994;Oberholzer et al.,1995a;Oberholzer et al.,1995b;Walde et al.,1994;Wick&Luis
i,1996)。

膜エンベロープベシクル系の場合は、水相の大部分がベシクル外部にあり、従って非コ
ンパートメント化されている。反応がマイクロカプセル内に限定されるためには、この連
続の水相を除去するか、または、その内部の生物学的な系を抑制または破壊しなければな
らない(Luisi et al.,1987)。

酵素触媒性化学反応はまた、種々の他の方法により産生されたマイクロカプセル内でも
実証されている。多くの酵素はＡＯＴ−イソオクタン−水系(Menger&Yamada,1979)のよう
に逆ミセル溶液中(Bru&Walde,1991;Bru&Walde,1993;Creagh et al.,1993;Haber et al.,1
993;Kumar et al.,1989;Luisi&B.,1987;Mao&Walde,1991;Mao et al.,1992;Perez et al.,
1992;Walde et al.,1994;Walde et al.,1993;Walde et al.,1998)で活性である。

マイクロカプセルはまた界面重合および界面複合体形成により産生させることができる
(Whateley,1996)。この種のマイクロカプセルは剛性で非透過性の膜または半透過性の膜
を有することができる。硝酸セルロース膜、ポリアミド膜および脂質−ポリアミド膜を境
界とする半透過性のマイクロカプセルは全て、多酵素系を含む生化学的反応を支援できる
(Chang,1987;Chang,1992;Lim,1984)。極めて穏やかな条件下で形成できるアルギネート／
ポリリジンマイクロカプセル(Lim&Sum,1980)もまた極めて生体適合性が高いことがわかっ
ており、例えば生細胞および組織のカプセル化の有効な方法を与える(Chang,1992;Sun et
al.,1992)。

エマルジョンのようなコロイド系における水性の環境の相分配に基づく非膜マイクロカ
プセル化系も使用してよい。

好ましくは本発明のマイクロカプセルはエマルジョン、即ち、顕微鏡的またはコロイド
サイズの液滴として相の一方が他方の内部に分散している２つの非混和性の液相の不均質
な系から形成する(Becher,1957;Sherman,1968;Lissant,1974;Lissant,1984)。

エマルジョンは、非混和性の液体の任意の適当な組み合わせから製造することができる
。好ましくは本発明のエマルジョンは微細分割液滴の形態で存在する相（分散した内部ま
たは不連続の相）としての水（生化学的成分を含有）およびこれらの液滴が懸濁している
マトリックス（非分散の連続または外部の相）としての疎水性の非混和性液体（油）を有
する。このようなエマルジョンを油中水（Ｗ／Ｏ）と称する。これは生化学的成分を含有
する全水相が個別の液滴（内層）内にコンパートメント化されているという利点を有する
。疎水性の油である外層は一般的には生化学的成分は含まず、従って不活性である。

エマルジョンは界面活性剤１つ以上を添加することにより安定化する。これらの界面活
性剤は乳化剤と称され、水／油界面に作用して相の分離を防止（または少なくとも遅延）
する。多くの油状物および多くの乳化剤を油中水エマルジョンの産生のために使用でき、
最近の集計では16,000を超える界面活性剤が存在し、その多くは乳化剤として使用されて
いる(Ash and Ash,1993)。適当な油は軽質白色鉱物油およびデカンを包含する。適当な界
面活性剤は、非イオン系界面活性剤(Schick,1966)、例えばソルビタンモノオレエート(Sp
an(商標)80;ICI)、ソルビタンモノステアレート(Span(商標)60;ICI)、ポリオキシエチレ
ンソルビタンモノオレエート(Tween(商標)80;ICI)およびオクチルフェノキシエトキシエ
タノール(Triton X-100)；イオン系界面活性剤、例えばコール酸ナトリウムおよびタウロ
コール酸ナトリウムおよびデオキシコール酸ナトリウム；化学的に負活性なシリコーン系
の界面活性剤、例えばポリシロキサン−ポリセチル−ポリエチレングリコール共重合体（
セチルジメチコンコポリオール）(例えばAbil(商標)EM90;Glodschmidt)；およびコレステ
ロールを包含する。

フッ化炭素（または過フッ化炭素）連続相を有するエマルジョン(Krafft et al.,2003;
Riess,2002)は特に好ましい。例えば、安定なパーフルオロオクチルブロミド中水および
パーフルオロオクチルエタン中水のエマルジョンは界面活性剤としてＦ−アルキルジモル
ホリノホスフェートを用いながら形成できる(Sadtler et al.,1996)。非フッ化化合物は
本質的にはフッ化炭素および過フッ化炭素中に不溶性であり(Curran,1998;Hildebrand an
d Cochran,1949;Hudlicky,1992;Scott,1948;Studer et al.,1997)、小型薬剤様分子（典
型的には＜５００ＤａおよびＬｏｇＰ＜５）(Lipinski et al.,2001)はフッ化炭素中水お
よび過フッ化炭素中水のエマルジョンの水性マイクロカプセル中極めて効果的にコンパー
トメント化され、マイクロカプセル間の交換は殆どまたは全くない。

エマルジョンの形成は一般的に相を強制的に共存させるための機械的エネルギーの適用
を必要とする。これを行うための種々の機械的装置、例えば攪拌器（磁気攪拌子、プロペ
ラおよびタービン攪拌器、パドル装置およびウイスク）、ホモゲナイザー（例えばロータ
ーステーターホモゲナイザー、高圧弁ホモゲナイザーおよびジェットホモゲナイザー）、
コロイドミル、超音波および「膜乳化」装置(Becher,1957;Dickinson,1994)を利用した種
々の方法がある。

複雑な生化学的過程、特に遺伝子の転写および翻訳もまた油中水エマルジョン中に形成
される水性マイクロカプセル内で活性である。これにより、油中水エマルジョン内のコン
パートメント化が遺伝子の選択に使用可能となり、遺伝子はエマルジョンマイクロカプセ
ル内で転写および翻訳され、それらがコードするタンパク質の結合または触媒活性により
選択される(Doi and Yanagawa,1999;Griffiths and Tawfik,2003;Lee et al.,2002;Sepp
et al.,2002;Tawfik and Griffiths,1998)。これはエマルジョン内に形成された水性マイ
クロカプセルが一般的に安定であり、マイクロカプセル間での核酸、タンパク質または酵
素触媒反応の生成物の交換があったとしても極僅かであるために可能となった。

数千リットルの工業的規模までの容量のエマルジョンを形成する技術も存在する(Beche
r,1957;Sherman,1968;Lissant,1974;Lissant,1984)。

好ましいマイクロカプセルサイズは本発明に従って実施するべき任意の個々のスクリー
ニング方法の厳密な条件に応じて変動する。全ての場合において、化合物および標的の活
性の特性(identity)を測定するためには、化合物ライブラリと試験の感度との間には最適
なバランスが存在する。

エマルジョンマイクロカプセルのサイズは、スクリーニング系の条件に応じてエマルジ
ョンを形成するために使用されるエマルジョン条件を単に調節することにより変化させて
よい。究極的な制約要因はマイクロカプセルのサイズ、即ち単位容量当たり可能なマイク
ロカプセル数であることから、マイクロカプセルサイズが大きくなるほど、所与の化合物
ライブラリをカプセル化するために必要となる容量は大きくなる。

油中水エマルジョンは外部（連続）水相を有する水中油中水のダブルエマルジョンを形
成するために再乳化できる。これらのダブルエマルジョンを分析し、任意選択的にフロー
サイトメーターを用いて分類することができる(Bernath et al.,2004)。

高度に単分散されたマイクロカプセルは微小流体技術を用いて製造できる。例えば、３
％未満の多分散性を有する油中水エマルジョンは油中の共流動ストリームの液滴破壊によ
り形成することができる(Umbanhowar et al.,2000)。微小流体システムはまた、微小流体
チャンネル内の油のストリーム中に分散した水性微小液滴の層流のために使用できる(Tho
rsen et al.,2001)。これによりフロー分析のための微小流体装置の構築、および、任意
選択的に微小液滴のフロー分類が可能となる(Fu et al.,2002)。

マイクロカプセルは好ましくは融合するか分割(split)する。例えば微小流体システム
を用いて水性微小液滴を融合および分割させることができる(Link et al.,2004;Song et
al.,2003)。マイクロカプセルの融合により試薬の混合が可能となる。例えば標的を含有
するマイクロカプセルと化合物を含有するマイクロカプセルの融合は標的と化合物の反応
を開始させる。マイクロカプセルのスプリッティングにより、単一のマイクロカプセルを
より小さいマイクロカプセル２個以上に分割させる。例えば化合物を含有する単一のマイ
クロカプセルを複数のマイクロカプセルに分割し、これをその後異なる標的を含有する異
なるマイクロカプセルに各々融合させる。標的を含有する単一のマイクロカプセルはまた
複数のマイクロカプセルに分割し、これをその後異なる化合物または異なる濃度の化合物
を含有する異なるマイクロカプセルと各々融合させることができる。

マイクロカプセルは例えば蛍光色素を取り込むことにより光学的にタグ付けできる。好
ましい形態においては、マイクロカプセルは量子ドットを取り込むことにより光学的にタ
グ付けされ、１０濃度の６色の量子ドットは１０⁶マイクロカプセルのコード化を可能と
する(Han et al.,2001)。微小流体チャンネル内を秩序のある順序で流動するマイクロカ
プセルは、マイクロカプセルのストリームにおけるその順序によりコード化（完全または
部分的）できる（位置コード化）。

マイクロスフェア、ラテックス粒子、ビーズまたはミニビーズとして当業者に知られて
いるマイクロビーズは２０ｎｍ〜１ｍｍの直径のものが入手可能であり、種々の材料、例
えばシリカおよび種々の重合体、共重合体および３元重合体、例えばポリスチレン（ＰＳ
）、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）、ポリビニルトルエン（ＰＶＴ）、スチレン
／ブタジエン（Ｓ／Ｂ）共重合体およびスチレン／ビニルトルエン（Ｓ／ＶＴ）共重合体
から製造できる(www.bangslabs.com)。これらは広範な種類の機能表面基、即ちアルデヒ
ド、脂肪族アミン、アミド、芳香族アミン、カルボン酸、クロロメチル、エポキシ、ヒド
ラジド、ヒドロキシル、スルホネートおよびトシルにより付与される疎水性表面（例えば
プレーンポリスチレン）から極めて親水性の表面まで、種々の表面化学のものが入手可能
である。官能基はマイクロビーズ表面への化合物の安定または過逆的な結合のための広範
な共有結合反応を可能とする。

マイクロビーズは例えば蛍光色素を取り込むことにより光学的にタグ付けできる。例え
ば、厳密な比率の赤色（＞６５０ｎｍ）およびオレンジ色（５８５ｎｍ）の蛍光色素によ
る標識のため、各々が独特のスペクトルアドレスを有する１００種の異なるビーズのセッ
トを形成し(Fulton et al.,1997)(www.luminex.com)、１０⁶ビーズ以下のセットを１０強
度６色の量子ドットを取り込むことによりコード化できる(Han et al.,2001)。

化合物を当業者のよく知る種々の手段により共有結合的または非共有結合的にマイクロ
ビーズに連結できる(例えばHarmanson,1996参照)。好ましくは、化合物は切断可能なリン
カーを介して結合する。このような種々のリンカーは当業者が知る通りであり(例えばGor
don and Balasubramanian,1999参照)、例えば光化学的に切断できるリンカーおよびｐＨ
の変更により（例えばイミンおよびアシルヒドラゾン）、酸化還元特性を調節することに
より（例えばジスルフィド）または外部触媒を用いながら（例えば交差複分解(cross-met
hathesis)およびアミド転換）制御することができる可逆共有結合が挙げられる。

本発明の方法は化合物のプール（ライブラリまたはレパートリー）中で標的の活性を所
望の方法でモジュレートする化合物の識別を可能とする。

本発明の方法は化合物のレパートリーまたはライブラリのスクリーニングのために有用
である。従って本発明は化合物を化合物のライブラリから識別する本発明の前記の態様に
従った方法を提供する。

本発明により識別される化合物は好ましくは薬理学的または産業上の利益を有し、例え
ば診断および治療用途のために適する細胞シグナル伝達機序のような生物学的系の活性化
剤または抑制剤を包含する。従って好ましい態様において本発明は臨床上または産業上有
用な物の発見を可能にする。本発明の別の態様において、本発明の方法により単離される
物が提供される。

適当なカプセル化条件の選択が望ましい。スクリーニングすべき化合物ライブラリの複
雑度およびサイズに応じて、マイクロカプセル当たり１つの化合物（または１つ以下のマ
イクロビーズ）がカプセル化されるようにカプセル化の操作法を設定することが有利であ
る。これにより分割力が最大となる。しかしながらライブラリがより大きいおよび／また
はより複雑である場合は、これは非現実的であり；数種の化合物（または数個のマイクロ
ビーズ）を共にカプセル化し、本発明の方法の反復適用に依存して所望の化合物を識別す
ることが好ましい。カプセル化の操作法の組み合わせを用いて所望の化合物を識別してよ
い。

理論的な研究によれば、化合物の数量が多いほど所望の特性を有する化合物が生成され
やすいことを示している（このことがどのように抗体のレパートリーに適用されるかの説
明(Perelson and Oster,1979)を参照）。また実際には、より大きいファージ−抗体レパ
ートリーは確実により小さいレパートリーよりも良好な結合親和性を有するより多くの抗
体をもたらすことが確認されている(Griffiths et al.,1994)。まれな変異体が形成され
識別を可能とするには、大型のライブラリのサイズが望ましい。即ち、至適に小型である
マイクロカプセルの使用が有利である。

これまで、１ｎｌ容量のスポットの二次元のマイクロアレイを用いて単一の実験におい
てスクリーニングできる化合物の最大のレパートリーは〜１０³であった(Hergenrother e
t al.,2000)。本発明を用いれば、２．６ｍｍのマイクロカプセル直径において(Tawfik a
nd Griffiths,1998)、３次元の分散体を形成することにより、少なくとも１０¹¹のレパー
トリーサイズを２０ｍｌエマルジョン中１ｍｌ水相を用いてスクリーニングできる。

上記した化合物または化合物でコーティングされたマイクロビーズのほかに、本発明の
マイクロカプセルはスクリーニング過程を起こすために必要な別の成分を含む。それらは
標的および適当な緩衝液を含む。適当な緩衝液は生物学的系の所望の成分の全てが活性と
なるようなものであり、従って、各々の特定の反応系の条件により異なる。生物学的およ
び／または化学的反応に適する緩衝液は当分野で知られており、その処方はSambrook and
Russell,2001のような種々の実験テキストに記載されている。

系の別の成分は標的の活性を試験するために必要なものを包含する。それらは例えば標
的により触媒される反応の基質およびコファクター、および、標的に結合するリガンドを
含む。それらはまた標的の活性の検出を可能にする標的の活性にカップリングされた反応
の他の触媒（酵素を含む）、基質およびコファクターを含む。

〔（Ｂ）スクリーニング操作法〕
標的に結合するか標的の活性をモジュレートする化合物をスクリーニングするためには
、標的を化合物または化合物コーティングマイクロビーズ１つ以上と共にマイクロカプセ
ル内にコンパートメント化する。好ましくは、各マイクロカプセルは単一の種類のみの化
合物であるがそのコピーの多くを含有する。好ましくは、各マイクロビーズは単一の種類
のみの化合物であるがそのコピーの多くによりコーティングされる。好ましくは、化合物
は切断可能なリンカーを介してマイクロビーズに連結され、それらはコンパートメント中
のマイクロビーズから放出されるようになる。好ましくは、各マイクロカプセルまたはマ
イクロビーズは光学的にタグ付けされることによりマイクロビーズに結合しているマイク
ロカプセル内に含有される化合物の識別を可能にする。

（（ｉ）結合に関するスクリーニング）
化合物は標的への結合について直接スクリーニングできる。本実施形態においては、化
合物がマイクロビーズに結合し、標的への親和性を有する場合には、それは標的に結合す
る。反応の終了時に、全マイクロカプセルを合わせ、全てのマイクロビーズを１つの環境
内に共にプールする。標的に特異的に結合するか、または特異的に反応する分子を用いな
がらアフィニティー精製により所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズを選択
できる。

別の実施形態においては、標的を当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合
できる(例えばHermanson,1996参照)。スクリーニングすべき化合物は共通の特徴、即ちタ
グを含有する。化合物はマイクロビーズから放出され、化合物が標的に対する親和性を有
する場合にそれに結合する。反応終了時に、全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビ
ーズを１つの環境内に共にプールする。「タグ」に特異的に結合するか、または特異的に
反応する分子を用いながらアフィニティー精製により所望の結合を示す化合物を担持する
マイクロビーズを選択できる。

別の実施形態においては、標的に結合する化合物が例えば別の結合相手からのリガンド
を単に隠すだけであることに基づき、マイクロビーズをスクリーニングしてよい。この偶
発性において、マイクロビーズはアフィニティー精製工程中に保持されるよりはむしろ選
択的に溶出される一方、他のマイクロビーズは結合される。

親和性による分類は結合が起こる条件における結合対の２メンバーの存在に依存してい
る。この目的のために任意の結合対を使用してよい。本明細書において用いられるように
、結合対という用語は相互に結合することができる分子の任意の対を指す。本発明におい
て使用してよい結合対の例は抗原と抗原に結合できる抗体またはそのフラグメント、ビオ
チン−アビジン／ストレプトアビジン対(Savage et al.,1994)、カルシウム依存性結合ポ
リペプチドおよびそのリガンド（例えばカルモジュリンとカルモジュリン結合ペプチド(M
ontigiani et al.,1996;Stofko et al.,1992)）；組み立てられてロイシンジッパーを形
成するポリペプチドの対(Tripet et al.,1996)、ヒスチジン（典型的にはヘキサヒスチジ
ンペプチド）とキレート化Ｃｕ²⁺、Ｚｎ²⁺およびＮｉ²⁺（例えばＮｉ−ＮＴＡ；(Hochuli
et al.,1987)）、ＲＮＡ結合とＤＮＡ結合タンパク質(Klug et al.,1995)、例えば亜鉛
フィンガーモチーフを含有するもの(Klug and Schwabe,1995)およびＤＮＡメチルトラン
スフェラーゼ(Anderson,1993)とそれらの核酸結合部位を包含する。

別の実施形態においては、化合物はマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性
の変化を用いて標的への結合についてスクリーニングできる。

標的への化合物の結合の後のマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変化
は以下に記載するものを含む種々の方法で誘導することができる。
（１）化合物自体が特徴的な光学特性を有してもよい。例えばそれは蛍光である。
（２）化合物の光学特性が標的への結合により修飾されてもよい。例えば、化合物の蛍光
が結合によりクエンチングされるか増強される(Voss,1993;Masui and Kuramitsu,1998)。
（３）標的の光学特性が化合物への結合により修飾されてもよい。例えば、標的の蛍光が
結合によりクエンチングされるか増強される(Guixe et al.,1998;Qi and Grabowski,1998
)。
（４）標的および化合物の両方の光学特性が結合により修飾されてもよい。例えば標的か
ら化合物（またはその逆）の蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）が生じ、「ドナー」の
吸収波長における励起があれば「アクセプター」発光波長における発光が生じる(Heim&Ts
ein,1996;Mahajan et al.,1998;Miyawaki et al.,1997)。

本発明によると、所望の活性を有する化合物がマイクロカプセルの光学特性の変化を誘
導し、これにより、当該化合物を含有するマイクロカプセルおよびそこに含有されるマイ
クロビーズの識別および任意選択的に分類が可能となる方法が提供される。

別の実施形態においては、本発明によると、共通のコンパートメント１つ以上内にマイ
クロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する方法が提供される。本実施形態
においては所望の活性を有する化合物はそれを担持する（そして同じマイクロカプセル内
に存在する）マイクロビーズの光学特性を修飾してその識別および任意選択的に分類を可
能にする。

本実施形態においては、標的への化合物の結合は必ずしも光学特性の変化を直接誘導す
る必要は無い。

本実施形態において、マイクロビーズに結合した化合物が標的に対する親和性を有する
場合は、それは標的に結合する。反応終了時、全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロ
ビーズを１つの環境内に共にプールする。所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビ
ーズは、標的と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより
、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。
例えば、蛍光標識抗標的抗体を用いるか、または、抗標的抗体、次いで第１のものに結合
する第２の蛍光標識抗体を使用できる。

別の実施形態においては、標的を当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合
できる(例えばHermanson,1996参照)。スクリーニングすべき化合物は共通の特徴、即ちタ
グを含有する。化合物はマイクロビーズから放出され、化合物が標的に対する親和性を有
する場合にそれに結合する。反応終了時に全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビー
ズを１つの環境内に共にプールする。所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビーズ
は、「タグ」と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより
、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。
例えば、蛍光標識抗「タグ」抗体を用いるか、または、抗「タグ」抗体、次いで第１のも
のに結合する第２の蛍光標識抗体を使用できる。

別の実施形態においては、リガンドに結合する遺伝子産物が、例えばマイクロビーズの
光学特性を修飾する可能性がある別の結合相手からリガンドを単に隠すことに基づいて識
別してよい。この場合未修飾の光学特性を有するマイクロビーズが選択されるであろう。

マイクロビーズを蛍光性とするために、蛍光をチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ(商標)）
の増幅を用いて増強することができる(Sepp et al.,2002)。これは、マイクロビーズに結
合し、フルオレセイン−チラミンから遊離のラジカル形態（その後（局所的に）マイクロ
ビーズと反応する）への変換を触媒するパーオキシダーゼ（別の化合物に連結）を使用す
る。ＴＳＡを実施する方法は当分野で知られており、キットがＮＥＮより販売されている
。

ＴＳＡは、マイクロビーズの蛍光の直接の増大をもたらすか、または、第２の蛍光分子
または（その１つ以上が蛍光性である）分子の配列が結合するマイクロビーズにリガンド
が結合するように設定される。

（（ii）結合の調節のためのスクリーニング）
別の実施形態においては、本発明は生化学的過程を調節する作用を有する化合物をスク
リーニングするために使用できる。化合物が標的の結合特性を活性化する場合、活性化さ
れる標的に対するリガンドを当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合できる
(例えばHermanson,1996参照)。反応終了時に全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビ
ーズを１つの環境内に共にプールする。所望の結合を示す化合物を担持するマイクロビー
ズは、標的と特異的に結合するか、または特異的に反応する分子を用いたアフィニティー
精製により選択できる。

別の実施形態においては、化合物が標的の結合活性を抑制することに基づいてマイクロ
ビーズをスクリーニングしてよい。この偶発性において、マイクロビーズはアフィニティ
ー精製工程中に保持されるよりはむしろ選択的に溶出される一方、他のマイクロビーズは
結合される。

別の実施形態において、化合物はマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の
変化を用いて標的の結合特性をモジュレートする能力についてスクリーニングできる。

リガンドへの標的の結合の後のマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の変
化は以下に記載するものを含む種々の方法で誘導することができる。
（１）リガンド自体が特徴的な光学特性を有してもよい。例えばそれは蛍光である。
（２）リガンドの光学特性が標的への結合により修飾されてもよい。例えば、リガンドの
蛍光が結合によりクエンチングされるか増強される(Voss,1993;Masui and Kuramitsu,199
8)。
（３）標的の光学特性がリガンドへの結合により修飾されてもよい。例えば、標的の蛍光
が結合によりクエンチングされるか増強される(Guixe et al.,1998;Qi and Grabowski,19
98)。
（４）標的およびリガンドの両方の光学特性が結合により修飾されてもよい。例えば標的
からリガンド（またはその逆）の蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）が生じ、「ドナー
」の吸収波長における励起があれば「アクセプター」発光波長における発光が生じる(Hei
m&Tsein,1996;Mahajan et al.,1998;Miyawaki et al.,1997)。

本発明によると、所望の活性を有する化合物がマイクロカプセルの光学特性の変化を誘
導し、これにより、化合物を含有するマイクロカプセルおよびそこに含有されるマイクロ
ビーズの識別および任意選択的に分類が可能となる方法が提供される。

別の実施形態においては、本発明によると、共通のコンパートメント１つ以上内にマイ
クロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する方法が提供される。本実施形態
においては所望の活性を有する化合物は、それを担持する（そして同じマイクロカプセル
内に存在する）マイクロビーズの光学特性を修飾してその識別および任意選択的に分類を
可能にする。

本実施形態においては、リガンドへの標的の結合は必ずしも光学特性の変化を直接誘導
する必要は無い。

本実施形態において、マイクロビーズに結合したリガンドが標的に対する親和性を有す
る場合は、それは標的に結合する。反応終了時、全マイクロカプセルを合わせ、全マイク
ロビーズを１つの環境内に共にプールする。結合活性をモジュレートする化合物を担持す
るマイクロビーズは、標的と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し
、これにより、識別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより
識別できる。例えば、蛍光標識抗標的抗体を用いるか、または、抗標的抗体、次いで第１
のものに結合する第２の蛍光標識抗体を使用する。

別の実施形態においては、標的を当業者の知る種々の手段によりマイクロビーズに結合
できる(例えばHermanson,1996参照)。スクリーニングすべきリガンドは共通の特徴、即ち
タグを含有する。反応終了時に全マイクロカプセルを合わせ、全マイクロビーズを１つの
環境内に共にプールする。結合をモジュレートする化合物を担持するマイクロビーズは、
「タグ」と特異的に結合するか、または特異的に反応する試薬を添加し、これにより、識
別を可能にするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導することにより識別できる。例え
ば、蛍光標識抗「タグ」抗体を用いるか、または、抗「タグ」抗体、次いで第１のものに
結合する第２の蛍光標識抗体を使用する。

上記した通り、蛍光はチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ(商標)）の増幅を用いて増強され
ることによりマイクロビーズを蛍光性とする(Sepp et al.,2002)。

（（iii）触媒作用の調節のスクリーニング）
別の実施形態において、本発明によると、所望の活性を有する化合物がマイクロカプセ
ルの光学特性の変化を誘導し、これにより、化合物を含有するマイクロカプセルおよび任
意選択的にそこに含有されるマイクロビーズの識別および任意選択的に分類が可能となる
方法が提供される。マイクロカプセルの光学特性は、
（１）異なる光学特性を有する調節された反応の基質および生成物（多くの蛍光発生酵素
基質は例えばHaugland,1996およびwww.probes.comより入手可能である）、例えばグリコ
シダーゼ、ホスファターゼ、ペプチダーゼおよびプロテアーゼの基質、または
（２）マイクロカプセル内の調節された反応の生成物（または基質）と特異的に結合また
は反応し、これにより、その識別を可能とするように、マイクロカプセルの光学特性の変
化を誘導する試薬の存在、の何れによっても修飾できる。

標的の活性をモジュレートするものを得るために化合物のライブラリをスクリーニング
するための広範な試験法は、光学特性の変化を検出することに基づいており、本発明に従
って化合物をスクリーニングするために使用できる。このような試験は当業者に周知であ
る（例えばHaugland,1996およびwww.probes.com参照）。

あるいは、選択は同じマイクロカプセル内で起こるその後の反応に第１の反応をカップ
リングすることにより間接的に実施してよい。これを行うには２通りの一般的な方法があ
る。第１に第１の反応の生成物を、第１の反応の基質とは反応しない分子と反応させるか
結合させる。第２に、カップリングされた反応は第１の反応の生成物の存在下にのみ進行
するようにする。その後、調節化合物は、第２の反応の生成物または基質の特性により識
別できる。

あるいは、選択すべき反応の生成物は第２の酵素触媒反応の基質またはコファクターで
あってよい。第２の反応を触媒する酵素はマイクロカプセル化よりも前に反応混合物に取
り込ませることができる。第１の反応が進行する場合のみ、カップリングされた酵素は識
別可能な生成物を生成することになる。

カップリングのこの概念は前の反応の生成物を基質として各々が使用する複数の酵素を
取り込むために調整することができる。これにより固定化された基質とは反応しない酵素
の調節物質の選択が可能になる。１つの反応の生成物が選択可能な生成物をもたらす第２
の反応または反応のシリーズのための触媒またはコファクターである場合、シグナル増幅
により増強された感度を得るように設計することもできる(例えばJohannsson,1991;Johan
nsson and Bates,1988参照)。更にまた、酵素カスケード系は酵素の活性化物質の生産ま
たは酵素阻害剤の破壊に基づくこともできる(Mize et al.,1989参照)。カップリングはま
た、同じ生成物を生成する酵素の全体の群に対して共通のスクリーニング系を使用でき、
複雑な多工程の化学的変換および経路の調節の選択を可能にするという利点も有する。

別の実施形態においては、標的そのものが酵素である場合、または、標的が酵素的であ
る生化学的過程を調節する場合、各マイクロカプセルにあのマイクロビーズは酵素的反応
のための基質でコーティングしてよい。調節化合物は、基質が生成物に変換される程度を
決定する。反応終了時、触媒された反応の生成物にマイクロビーズを物理的に連結する。
マイクロカプセルを合わせて反応体をプールすると活性化化合物でコーティングされたマ
イクロビーズは生成物に特異的な任意の性質により識別できる。阻害剤が望まれる場合は
、調節された反応の基質に特異的な化学的特性があるものを選択できる。

更にまた、基質はマイクロビーズに結合しないことが望ましい場合もある。この場合、
基質は光活性化のような自体の活性化のための別の工程を要する不活性の「タグ」を含有
するであろう（例えば「ケージ化」ビオチン類縁体(Pirrung and Huang,1996;Sundberg e
t al.,1995)。基質から生成物への変換の後、「タグ」は活性化され、「タグ付け」され
た基質および／または生成物はマイクロビーズに結合したタグ結合分子（例えばアビジン
またはストレプトアビジン）に結合する。従って、「タグ」を介して核酸に結合した生成
物に対する基質の比は溶液中の基質および生成物の比を反映するものとなる。ケージ化ビ
オチンでタグ付けされた基質はマイクロカプセル中のコンパートメント化に基づく操作法
を用いたホスホトリエステラーゼ活性を有する酵素をコードする遺伝子の選択のために使
用されている(Griffiths and Tawfik,2003)。ホスホトリエステラーゼ基質は活性酵素分
子を含有するマイクロカプセル内の溶液中で加水分解され、反応が終了した後、ケージン
グ基を放射線照射により放出させ、酵素をコードする遺伝子が結合したマイクロビーズに
ビオチン部分を介して生成物が結合できるようにされている。

マイクロビーズおよびマイクロカプセル内の内容物が混合された後、適宜生成物または
基質に対して特異的に結合する分子（例えば抗体）を用いたアフィニティー精製により調
節物質でコーティングされたマイクロビーズを選択できる。

別の実施形態においては、本発明によると、共通のコンパートメント１つ以上内にマイ
クロカプセルをプールした後にマイクロビーズを分析する方法が提供される。調節化合物
でコーティングしたマイクロビーズはマイクロビーズの光学特性の変化を用いて識別でき
る。生成物（または基質）が結合したマイクロビーズの光学特性は、
（１）例えば下記の理由により、基質−マイクロビーズ複合体では検出されない特徴的な
光学特性を有する生成物−マイクロビーズ複合体；
（ａ）異なる光学特性を有する基質および生成物（多くの蛍光発生酵素基質は例えばHaug
land,1996およびwww.probes.comより入手可能である）、例えばグリコシダーゼ、ホスフ
ァターゼ、ペプチダーゼおよびプロテアーゼの基質、または、
（ｂ）同じ光学特性を有する基質および生成物、ただし、基質ではなく生成物のみがマイ
クロビーズと結合または反応するもの；
（２）生成物（または基質）と特異的に結合または反応し、これにより、その識別を可能
とするマイクロビーズの光学特性の変化を誘導する試薬の添加（これらの試薬はマイクロ
カプセルの破壊およびマイクロビーズのプールの前または後に添加できる）。その試薬は
、基質および生成物の両方がマイクロビーズに結合する場合は、基質ではなく生成物のみ
（またはその逆）に特異的に結合または特異的に反応するか、または、基質ではなく生成
物のみがマイクロビーズに結合または反応する（またはその逆）場合に、任意選択的に基
質および生成物の両方に結合する；の何れによっても修飾できる。

このシナリオにおいて、基質（または基質の１つ）はマイクロビーズには連結されてい
ないが分子「タグ」（例えばビオチン、ＤＩＧまたはＤＮＰまたは蛍光基）を有する各マ
イクロカプセル内に存在できる。調節された酵素が基質を生成物に変換する場合、生成物
は「タグ」を保有し、その後生成物特異的抗体によりマイクロカプセル内で捕獲される。
全ての反応が停止しマイクロカプセルが合わせられた時点で、これらのマイクロビーズは
「タグ付け」され、例えば「タグ」が蛍光基である場合は、変化した光学特性を既に有し
てもよい。あるいは、「タグ付け」されたマイクロビーズの光学特性の変化は「タグ」（
例えば蛍光標識アビジン／ストレプトアビジン、蛍光性の抗「タグ」抗体または第２の蛍
光標識抗体により検出できる非蛍光の抗「タグ」抗体）に結合する蛍光標識されたリガン
ドを添加することにより誘導できる。

（（iv）化合物の特異性／選択性のスクリーニング）
特定の標的に対する特異性または選択性を有するが他のものに対しては有さない化合物
は、１つの基質を用いた反応の調節に関する積極的スクリーンまたは別の基質との反応の
調節に関する消極的スクリーンを実施することにより特異的に識別できる。例えば、２種
の異なる標的酵素に特異的な２種の基質を各々異なる蛍光発生部分で標識する。各標的酵
素は異なる蛍光スペクトルを有する生成物の生成を触媒し、２種の標的に対する化合物の
特異性に応じてマイクロカプセルの異なる光学特性をもたらす。

（（ｖ）細胞を使用するスクリーニング）
現在の薬剤発見の状況においては、有効化された組み換え標的がインビトロの高スルー
プットスクリーニング（ＨＴＳ）試験の根拠を形成している。しかしながら単離されたタ
ンパク質は複雑な生物学的系の代表とはみなされず；従って、細胞に基づく系は、インタ
クトな生物学的系において化合物の活性のより高い信頼性をもたらす。薬剤に関する広範
な細胞系試験が当業者に知られている。細胞は、油中水エマルジョンの水性微小液滴のよ
うなマイクロカプセル内にコンパートメント化できる(Ghadessy,2000)。標的に対する化
合物の作用は、化合物と共にマイクロカプセル内に細胞をコンパートメント化すること、
および、適切な細胞系試験を用いて細胞に対して所望の作用を有する化合物を含有するコ
ンパートメントを識別することにより測定することができる。フッ化炭素中水のエマルジ
ョンの使用は特に好ましく、フッ化炭素の高い気体溶解能が呼吸ガスの交換を支援でき、
細胞培養系に有利であることが報告されている(Lowe,2002)。

（（vi）フローサイトメトリー）
本発明の好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズをフロ
ーサイトメトリーにより分析および任意選択的に分類する。マイクロカプセルの多くのフ
ォーマットをフローサイトメトリーを用いておよび任意選択的に直接分類できる。マイク
ロカプセルの一部のフォーマットは分析または分類の前にマイクロカプセルを別途処理す
ることを必要とする場合がある。例えば油中水エマルジョンはフローサイトメトリーによ
る分析を容易にするために水中油中水のダブルエマルジョンに変換できる(Bernath et al
.,2004)。多重エマルジョンは単純な一次油中水（または水中油）エマルジョンを再乳化
して水中油中水（または油中水中油）エマルジョンとすることにより製造される(Davis a
nd Walker,1987)。

高度に単分散したマイクロカプセルは微小流体技術を用いて製造できる。例えば多分散
度３％未満の油中水エマルジョンは、油の共流動ストリーム内の液滴の破壊により産生で
きる(Umbanhowar,2000)。微小流体システムはまた微小流体チャンネル内の油のストリー
ム中に分散された水性の微小液滴の層流のためにも使用できる(Thorsen,2001)。これによ
り微小液滴の流動の分析および任意選択的に流動の分類のための微小流体装置の構築が可
能となる(Fu,2002)。

種々の光学特性を分析のため、および、分類をトリガーするために使用でき、例えば光
散乱(Kerker,1983)および蛍光分極(Rolland et al.,1985)が挙げられる。高度に好ましい
実施形態においては、マイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学特性の差は蛍光の差
であり、必要に応じて、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは蛍光活性化細胞ソータ
ー(Norman,1980;Mackenzie and Pinder,1986)または同様の装置を用いて分類する。フロ
ーサイトメトリーは下記の一連の利点を有する。

（１）信頼できる製造元(例えばBecton-Dickinson,Coulter,Cytomation)の市販の蛍光
活性化細胞分類装置により100,000マイクロカプセルまたはマイクロビーズｓ^-1までの分
析および分類が可能である。

（２）各マイクロカプセルまたはマイクロビーズから生じる蛍光シグナルは存在する蛍
光分子の数に厳格に対応している。マイクロカプセルまたはマイクロビーズ当たり僅か数
百の蛍光分子でも定量的に検出できる。

（３）蛍光検出器のダイナミックレンジが広い（典型的には４対数単位）ことにより、
分類の操作法の厳密性を容易に設定でき、これにより、原料プールから至適数量のマイク
ロカプセルまたはマイクロビーズを回収できる（ゲートは蛍光の僅かな差を有するマイク
ロカプセルまたはマイクロビーズを分離するか、蛍光の大きな差を有するマイクロカプセ
ルまたはマイクロビーズを分離するのみとするか、実施する選択に応じて設定できる）。

（４）市販の蛍光活性化細胞分類装置は複数の波長において同時に励起および検出を実
施でき(Shapiro,1995)、これにより、２〜１３（またはそれ以上）の蛍光マーカーによる
マイクロカプセルまたはマイクロビーズの標識をモニタリングすることにより積極的およ
び消極的な選択を同時に実施でき、例えば２種の交互の標的に対する基質を異なる蛍光タ
グで標識する場合、マイクロカプセルまたはマイクロビーズは調節される標的に応じて異
なる蛍光団で標識できる。

マイクロカプセルまたはマイクロビーズを光学的にタグ付けする場合は、フローサイト
メトリーを用いてマイクロカプセル内に存在するまたはマイクロビーズ上にコーティング
された化合物を識別することもできる（後述を参照）。光学的タグ付けはマイクロカプセ
ル内の化合物の濃度（１段階より多い濃度を単一の実験で使用する場合）またはマイクロ
ビーズ上にコーティングされた化合物の分子の数（１段階より多いコーティング密度を単
一の実験で使用する場合）を識別するためにも使用できる。更にまた、光学的タグ付けは
、マイクロカプセル内の標的を識別するためにも使用できる（１種より多い標的を単一の
実験で使用する場合）。この分析はマイクロビーズを含有するマイクロカプセルの分類の
後、または、マイクロビーズの分類の後に、活性の測定と同時に実施できる。

（（vii）マイクロカプセルの識別および分類）
本発明は、使用する分類技術により可能となるインタクトのマイクロカプセルの識別お
よび任意選択的に分類を提供する。マイクロカプセルは、所望の化合物により誘導される
変化がマイクロカプセルの表面で発生または顕在化するか、または、マイクロカプセルの
外部から検出される場合に、そのまま識別され、任意選択的に分類することができる。変
化は、化合物の直接の作用によるか、または、うち１つ以上が所望の活性を有する化合物
を使用する一連の反応が変化をもたらすような間接的なものにより、誘導されてよい。例
えば、マイクロカプセルが膜マイクロカプセルである場合、標的を含む生化学的系の化合
物がその表面にディスプレイされ、これによりマイクロカプセル内のマイクロビーズ上の
化合物により調節される生化学的系の変化を検出できる試薬に接触可能となるようにマイ
クロカプセルを構成させてよい。

しかしながら本発明の好ましい態様においては、マイクロカプセルの識別および任意選
択的に分類は、マイクロカプセルの光学特性、例えばその吸収または発光の特性の変化、
例えばマイクロカプセルに伴う吸光度、ルミネセンス、燐光または蛍光の変化をもたらす
反応から生じるマイクロカプセルの光学特性の改変に依存している。このような特性の全
ては「光学的」という用語に包含される。そのような場合、マイクロカプセルは識別され
、任意選択的にルミネセンス、蛍光または燐光により活性化された分類により分類できる
。高度に好ましい実施形態においては、フローサイトメトリーを用いることにより、マイ
クロカプセル内の蛍光分子の生成をもたらす所望の活性を有する化合物を含有するマイク
ロカプセルを分析および任意選択的に分類する。

別の実施形態においては、マイクロカプセルの蛍光の変化は、それが識別されれば、コ
ンパートメント内のマイクロビーズの修飾をトリガーするのに用いられる。本発明の好ま
しい態様において、マイクロカプセルの識別はマイクロカプセル内部のルミネセンス、燐
光または蛍光をもたらす反応から生じるマイクロカプセルの光学特性の変化に依存してい
る。マイクロカプセル内のマイクロビーズの修飾は、ルミネセンス、燐光または蛍光の識
別によりトリガーされる。例えば、ルミネセンス、燐光または蛍光の識別はマイクロビー
ズまたはそれに結合している分子の修飾をもたらす光子（または他の粒子または波動）に
対するコンパートメントの衝突をトリガーすることができる。同様の操作法が細胞の急速
分類に関して以前に記載されている(Keij et al.,1994)。マイクロビーズの修飾は、例え
ばマイクロビーズへの光不安定性保護基でケージ化された分子「タグ」のカップリングか
ら生じるものであってよく、適切な波長の光子との衝突はケージの除去をもたらす。その
後、全てのマイクロカプセルを合わせ、マイクロビーズを１つの環境内に共にプールする
。所望の活性を示す化合物でコーティングされたマイクロビーズは「タグ」に特異的に結
合するか特異的に反応する分子を用いてアフィニティー精製により選択できる。

〔（Ｃ）化合物ライブラリ〕
ライブラリは種々の市販の原料から得ることができる。ライブラリ内の化合物は当業者
の周知の種々の方法により製造できる。任意選択的に、化合物ライブラリは空間的に分割
されたパラレル合成を用いた、または、スプリット合成を用いたコンビナトリアル合成に
より製造でき、任意選択的に１ビーズ１化合物のライブラリを生成させる。任意選択的に
、化合物はビーズ上で合成できる。これらのビーズは直接マイクロカプセル内にコンパー
トメント化するかコンパートメント化の前に化合物を放出させることができる。

好ましくは、化合物の僅か１種のみであるが、その複数のコピーを各マイクロカプセル
内に存在させる。

任意選択的に、化合物は当業者の知る種々の手段により共有結合的に、または、非共有
結合的にマイクロビーズに連結できる(例えばHermanson,1996参照)。

マイクロビーズは広範な種類の機能表面基、即ちアルデヒド、脂肪族アミン、アミド、
芳香族アミン、カルボン酸、クロロメチル、エポキシ、ヒドラジド、ヒドロキシル、スル
ホネートおよびトシルにより付与される疎水性表面（例えばプレーンポリスチレン）から
極めて親水性の表面まで、種々の表面化学のものが入手可能である。官能基はマイクロビ
ーズ表面への化合物の安定または過逆的な結合のための当業者の周知の広範な共有結合反
応を可能とする。

好ましくは化合物は切断可能なリンカーを介してマイクロビーズに結合する。このよう
な種々のリンカーは当業者の知る通りであり(例えばGordon and Balasubramanian,1999参
照)、例えば光化学的に切断できるリンカー、および、ｐＨの変更により（例えばイミン
およびアシルヒドラゾン）、酸化還元特性を調節することにより（例えばジスルフィド）
または外部触媒を用いながら（例えば交差複分解およびアミド転換）制御することができ
る可逆共有結合が挙げられる。

好ましくは、化合物の僅か１種のみであるが、その複数のコピーを各ビーズ内に結合さ
せる。

〔（Ｄ）化合物の識別〕
マイクロカプセル内またはマイクロビーズ上の化合物は種々の方法で識別できる。識別
されたマイクロカプセルを分類（例えば蛍光活性化細胞ソーター：ＦＡＣＳを使用）する
場合、化合物は例えば質量スペクトル分析による直接の分析により識別できる。選択（例
えばアフィニティー精製による）または分類（例えばＦＡＣＳを使用）の結果として単離
されたビーズに結合したままで化合物が残存する場合、それらはまた例えば質量スペクト
ル分析による直接の分析により識別できる。マイクロカプセルまたはビーズは当業者の周
知の種々の手段によりタグ付けでき、そのタグを用いてビーズに結合した化合物を識別す
る(Czarnik,1997)。化合物をコード化する化学的、スペクトル分析的、電子的および物理
的な方法は全て使用してよい。好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはビ
ーズは異なる光学特性を有し、これにより光学的にコード化される。好ましい実施形態に
おいては、コード化は異なる蛍光特性を有するマイクロカプセルまたはビーズに基づく。
高度に好ましい実施形態においては、マイクロカプセルまたはビーズはマイクロカプセル
またはビーズ内に異なる濃度で存在する蛍光量子ドットを用いてコード化される(Han,200
1)。微小流体チャンネル内を順序だった配列として流動しているマイクロカプセルはまた
マイクロカプセルのストリーム内のその配列によりコード化（全体的または部分的）でき
る（位置コード化）。

好ましくは、各化合物は異なる濃度（典型的にはｍＭ〜ｎＭの範囲の濃度）で異なるマ
イクロカプセル内に存在することにより、用量応答曲線の作成を可能とする。これは、例
えば阻害化合物の阻害定数（Ｋ_i）の測定を可能にする。マイクロカプセル内の化合物の
濃度は例えば上記したマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学的コード化または位
置コード化により測定できる。

〔（Ｅ）標的の識別〕
好ましくは、各マイクロカプセルが同じ標的の複数のコピーを含有するように複数の異
なる標的をマイクロカプセル内にコンパートメント化できる。例えば複数のプロテインキ
ナーゼ、または単一の標的の複数の多形変異体をコンパートメント化することにより化合
物の特異性を測定可能にできる。マイクロカプセル内の標的の特性(identity)は、例えば
上記したマイクロカプセルまたはマイクロビーズの光学的コード化または位置コード化に
より測定できる。

ＰＴＰ１Ｂ阻害剤の例。ビス−ジフルオロメチレンホスホネート部分を有する化合物（例えば２）は単一の部分を有するものよりも有意に大きい力価を有する。 マイクロカプセル化を用いたＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング。オレンジ色または赤色の蛍光色素で染色した表面カルボキシレート基を有するポリスチレンビーズ(Fulton et al.,1997)をホスホペプチドＰＴＰ１Ｂ基質および切断可能なリンカーを介して結合したＰＴＰ１Ｂ阻害剤または非阻害化合物のいずれかで誘導する（１）。ビーズを混合した後、シングルのビーズおよび標的酵素（ＰＴＰ１Ｂ）を、油中水エマルジョンを形成することによりマイクロコンパートメント内に共局在化させる（２）。化合物を放出する（光化学的）（３）。阻害剤は生成物（脱ホスホリル化ペプチド）に変換される基質の量を低減する（４）。酵素反応を停止し、エマルジョンを破壊する（５）。緑色蛍光抗基質抗体で標識した後、ビーズを３色フローサイトメトリーで分析し、阻害の程度およびビーズ上の化合物を同時に測定する（６）。最終的に、化合物ライブラリを光学的にタグ付けされたビーズ（後述）にカップリングし、フローサイトメトリーにより急速にデコードすることができる（100,000ビーズｓ^-1以下）。ヒット化合物を再合成して、更に特性決定（７）するか合成進化の過程において産生して再スクリーニングすることができる（８）。 フッ化炭素中水エマルジョン中の小分子のコンパートメント化。実施例９に記載するとおりホモゲナイズにより水相中にテキサスレッド（１ｍＭ）およびカルセイン（１ｍＭ）を含有するパーフルオロオクチルブロミド中水エマルジョンを作成した。２種のエマルジョンを回転混合し、２４時間後にエピ蛍光顕微鏡により画像化した。微小液滴間のテキサスレッド（赤色蛍光）およびカルセイン（緑色蛍光）の交換は観察されなかった。

［実施例１：酵素タンパク質チロシンホスファターゼ１Ｂ（ＰＴＰ１Ｂ）の阻害剤のスク
リーニング］
ＰＴＰ１Ｂはインスリンおよびレプチンのシグナル伝達の負の調節物質である。インスリ
ンおよびレプチンに対する耐性はII型真性糖尿病および肥満の指標であり、従ってＰＴＰ
１Ｂは糖尿病および肥満の治療のための魅力的な薬剤標的である(Johnson et al.,2002)
。２種の油中水エマルジョンを以下の通り作成した。

デカン中の１％（ｗ／ｖ）Ｓｐａｎ６０および１％（ｗ／ｖ）コレステロールの溶液(
全てSigma Aldrichから)は、デカン７．８４ｍｌにＳｐａｎ６０を８０ｍｇ、コレステロ
ールを８０ｍｇ溶解することにより製造する。デカンを４５に加熱し、界面活性剤および
コレステロールの完全な可溶化を可能とする。界面活性剤／デカンの溶液を２００μｌバ
ッチに渡り分割し、３７のブロックヒーター中に入れる。

手操作押し出し装置(Mini extruder,Abanti Polar Lipids Inc,Alabaster,AL,USA)を製
造元の取扱説明書に従って組み立てる。押し出しのためには、平均孔径１４・高フシング
ルの１９ｍｍのTrack-Etchポリカーボネートフィルター(Whatman Nucleopore,Whatman,Ma
idstone,UK)をミニ押出機の内部に装着する。２本の気密性１ｍｌハミルトンシリンジ(Ga
stight#1001、Hamilton Co,Reno,Nevada,USA)を押し出しに使用する。デカン１ｍｌをに
ハミルトンシリンジ１本にロードしてシリンジをミニ押出機の一端に置き押出機の他方上
の空のハミルトンシリンジ内にフィルターを経由してそれを押し出すことにより、デカン
３ラ１ｍｌで押出機を前洗浄した。

第１のエマルジョンは、ＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐ
Ｈ７．４、１２５ｍＭ ＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ）(Doman et al
.,2002)中のビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有しており公知のＰＴＰ１Ｂ阻害
剤である１００・l化合物２（図１）５０・・Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標
的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc
.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホ
ネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)および１００・lテキサスレッド（Sigma；励
起／発光最大５９５／６１５ｎｍ；赤色蛍光）をハミルトンシリンジの１本に、予備加熱
したデカン／界面活性剤混合物を他のハミルトンシリンジにロードすることにより作成す
る。シリンジを押出機のフィルターホルダーの両側の開口部内に装着する。化合物混合物
を強制的にフィルターホルダーを通してデカン／界面活性剤混合物の入った別のシリンジ
内に入れ、直接強制的に元のシリンジに戻すことにより、押し出しの１往復を完了する。
合計で７．５往復の押し出しを完了する。充填されたシリンジを押出機から取り外し、１
．７ｍｌ Axygen試験管内にあける(#MCT-175-C、Axygen Scientific,Inc.,Union City,CA
,USA)。

第２の油中水エマルジョンは化合物２の代わりにＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物であ
る１００・lヒドロケイヒ酸(Aldrich)を、テキサスレッドの代わりに１００・lカルセイ
ン（Sigma；励起／発光最大４７０／５０９ｎｍ；緑色蛍光）を含有する以外は上記エマ
ルジョンと同一に作成する。

１：１０００〜１：１（化合物２エマルジョン：ヒドロケイヒ酸エマルジョン）の範囲
の比で２種のエマルジョンを振とうすることにより混合し、３０分間３７でインキュベー
トする。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（ＤｉＦＭＵ；励起／発光最大３５８／４５２ｎ
ｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質（ＤｉＦＭＵＰ）の量を低減する。

次に油中水エマルジョンを以下の通り水中油中水ダブルエマルジョンに変換する。押出
機（上記参照）を分解し、石鹸および逆浸透水で十分洗浄し、再度組み立てる。平均孔径
８・高フシングルの１９ｍｍTrack-Etchポリカーボネートフィルターを装着する。押出機
をリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）３×１ｍｌで予備洗浄する。０．５％（ｗ／ｖ）Ｔｗｅｅ
ｎ８０(Sigma Aldrich)を含有するＰＢＳ ７５０μｌを１ｍｌの気密性ハミルトンシリン
ジにロードし、押出機に装着する。油中水エマルジョン２５０μｌを別の１ｍｌハミルト
ンシリンジにロードし、押出機に装着する。エマルジョンを強制的にフィルターを通して
ＰＢＳ／０．５％Ｔｗｅｅｎ８０の入った別のシリンジ内に入れ、即座に強制的に元のシ
リンジに戻すことにより、押し出しの１サイクルを完了する。合計で４．５サイクルの押
し出しを完了する。充填されたシリンジを押出機から取り外し、１．７ｍｌAxygen試験管
内にあける。形成された水中油中水のダブルエマルジョンを氷上に置く。

次にダブルエマルジョンをMoFlo(Cytomation)フローサイトメトリーを用いた多色フロ
ーサイトメトリーにより分析する。主に、緑色蛍光を示す（ヒドロケイヒ酸を含有する）
マイクロカプセルがＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホスホリル化により青色蛍光も示
す。主に、赤色蛍光を示す（化合物２を含有する）マイクロカプセルがＰＴＰ１Ｂの阻害
により青色蛍光は殆どまたは全く示さない。

［実施例２］
２種の水性混合物を氷上（反応を防止するため）において作成する。第１の混合物はＰ
ＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭ ＮａＣ
ｌ、１０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中のビス−ジフルオロ
メチレンホスホネートを有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００・l化合物２
（図１）(Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、
残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，
８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular
Probes)および１００・lテキサスレッド（Sigma；励起／発光最大５９５／６１５ｎｍ；
赤色蛍光）を含有する。第２の混合物は化合物２の代わりにＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化
合物である１００・lヒドロケイヒ酸(Aldrich)を、テキサスレッドの代わりに１００・l
カルセイン（Sigma；励起／発光最大４７０／５０９ｎｍ；緑色蛍光）を含有する以外は
上記と同一に作成する。

化合物混合物の各々の５０μｌを順次、実施例１に記載したとおり作成し３７に保持し
たデカン中１％（ｗ／ｖ）Ｓｐａｎ６０および１％（ｗ／ｖ）コレステロールの溶液に添
加し、その間５ｍｍの分散ツールでUltra-TurraxT8ホモゲナイザー(IKA)を用いながら25,
000r.p.mでホモゲナイズする。ホモゲナイズは第２の小分量を添加した後３分間継続する
。次に生成した粗野なエマルジョンを実施例１の通り押し出し、微小な油中水エマルジョ
ンを作成し、３０分間３７でインキュベートする。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（Ｄｉ
ＦＭＵ；励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質（Ｄｉ
ＦＭＵＰ）の量を低減する。次に油中水エマルジョンを水中油中水ダブルエマルジョンに
変換し、実施例１に記載の通り多色フローサイトメトリーで分析する。主に、緑色蛍光を
示す（ヒドロケイヒ酸を含有する）マイクロカプセルがＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの
脱ホスホリル化により青色蛍光も示す。主に、赤色蛍光を示す（化合物２を含有する）マ
イクロカプセルがＰＴＰ１Ｂの阻害により青色蛍光は殆どまたは全く示さない。

［実施例３：化合物ライブラリからのＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング］
実施例１に記載の通り１００種の油中水エマルジョンを氷上（反応を防止するため）に
おいて作成する。第１のエマルジョンは、ビス−ジフルオロメチレンホスホネートを有し
ており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００・l化合物２(図１)(Johnson et al.,2002)
、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Researc
h Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−４−メチルウン
ベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)および発光最大５８５ｎ
ｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する予備設定された比のＱｄｏｔ（商標）ストレプ
トアビジンコンジュゲート(Quantum Dot Corporation,Hayward CA)の混合物をＰＴＰ１Ｂ
活性に適合した緩衝液（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭ ＮａＣｌ、１０
％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)に分散することにより作成する
。９９種の他の油中水エマルジョンは、化合物２の代わりにカルボン酸有機ビルディング
ブロックライブラリ(Aldrich)由来の９９種のカルボン酸のうちの１つ、および、発光最
大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する異なる比のＱｄｏｔ（商標）ストレ
プトアビジンコンジュゲートを各々が含有する以外は上記と同一である。全てのエマルジ
ョンにおいて、７０５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度は
１００ｎＭであり、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコ
ンジュゲートの濃度は０、１１、２２、３３、４４、５５、６６、７７、８８または１０
０ｎＭの何れかとする。従って、１００（１０ラ１０）通りのＱｄｏｔ（商標）ストレプ
トアビジンコンジュゲートの濃度があることになり、これにより、７０５ｎｍ、５８５ｎ
ｍおよび６５５ｎｍにおける蛍光の蛍光比を測定することにより読み取られる独特の蛍光
シグネチャーを各化合物を含有するマイクロカプセルが保有できるようになる。

１００種のエマルジョンを振とう攪拌により等しい比で混合し、温度を３０分間２５ま
で上昇させる。阻害剤は脱ホスホリル化生成物（DiFMU；励起／発光最大３５８／４５２
ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質(DiFMUP)の量を低減する。次に油中水エマルジ
ョンを水中油中水ダブルエマルジョンに変換し、実施例１に記載の通り多色フローサイト
メトリーで分析する。化合物２を含有するマイクロカプセルのＱｄｏｔ蛍光シグネチャー
のものを除き、主に、全てのマイクロカプセルはＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホス
ホリル化により青色蛍光を示す。

［実施例４：化合物ライブラリからのＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスクリーニング］
１００種の水性混合物を氷上（反応を防止するため）において作成する。第１の混合物
は、ＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭ
ＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ）(Doman et al.,2002)中のビス−ジフ
ルオロメチレンホスホネートを有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００・l化
合物２（図１）(Johnson et al.,2002)、５ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ
１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）、蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基
質６，８−ジフルオロ−４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Mol
ecular Probes)および発光最大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する予備設
定された比のＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲート(Quantum Dot Corpora
tion,Hayward CA)を含有する。９９種の他の水性混合物は、化合物２の代わりにカルボン
酸有機ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来の９９種のカルボン酸のうちの１
つ、および、発光最大５８５ｎｍ、６５５ｎｍおよび７０５ｎｍを有する異なる比のＱｄ
ｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲートを各々が含有する以外は上記と同一であ
る。全ての混合物において、７０５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプトアビジンコンジュゲ
ートの濃度は１００ｎＭであり、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍＱｄｏｔ（商標）ストレプ
トアビジンコンジュゲートの濃度は０、１１、２２、３３、４４、５５、６６、７７、８
８または１００ｎＭの何れかとする。従って、１００（１０ラ１０）通りのＱｄｏｔ（商
標）ストレプトアビジンコンジュゲートの濃度があることになり、これにより、７０５ｎ
ｍ、５８５ｎｍおよび６５５ｎｍにおける蛍光の蛍光比を測定することにより読み取られ
る独特の蛍光シグネチャーを各化合物を含有するマイクロカプセルが保有できるようにな
る。

化合物混合物の各々０．５μｌを順次、実施例１に記載したとおり作成し３７に保持し
たデカン中１％（ｗ／ｖ）Ｓｐａｎ６０および１％（ｗ／ｖ）コレステロールの溶液に添
加し、その間５ｍｍの分散ツールでUltra-TurraxT8ホモゲナイザー（ＩＫＡ）を用いなが
ら25,000r.p.mでホモゲナイズする。ホモゲナイズは第２の小分量を添加した後３分間継
続する。次に生成した粗野なエマルジョンを実施例１の通り押し出し、微小な油中水エマ
ルジョンを作成し、３０分間３７でインキュベートする。阻害剤は脱ホスホリル化生成物
（ＤｉＦＭＵ；励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍光）に変換される非蛍光基質
（ＤｉＦＭＵＰ）の量を低減する。次に油中水エマルジョンを水中油中水ダブルエマルジ
ョンに変換し、実施例１に記載の通り多色フローサイトメトリーで分析する。化合物２を
含有するマイクロカプセルのＱｄｏｔ蛍光シグネチャーのものを除き、主に、全てのマイ
クロカプセルはＰＴＰ１ＢによるＤｉＦＭＵＰの脱ホスホリル化により青色蛍光を示す。

［実施例５：微小流体システムにおけるマイクロカプセルを使用したＰＴＰ１Ｂ阻害剤
のスクリーニング］
微小チャンネルはポリ（ジメチルシロキサン）（ＰＤＭＳ）(McDonald and Whitesides
,2002)中の急速なフォトタイピングを用いて長方形の断面を有するように加工し、Song a
nd Ismagilov,2003に記載の通り疎水性を付与する。シリンジポンプを用いて流動を起こ
した（Harvard Apparatus PHD2000 Infusionポンプ）。水溶液については、取り外し可能
な２７ゲージ針のついた５０μｌのハミルトンガスタイトシリンジ（１７００シリーズ、
ＴＬＬ）を３０ゲージのテフロン（登録商標）チューブ(Weico Wire and Cable)と共に使
用した。キャリア流体に対しては、１ｍｌハミルトンガスタイトシリンジ（１７００シリ
ーズ、ＴＬＬ）をハミルトンの１ハブを有する３０ゲージのテフロン（登録商標）針と共
に使用した(Song and Ismagilov,2003)。キャリア流体はパーフルオロデカリン（ＰＦＤ
）中９％（ｖ／ｖ）のＣ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨとする(Song et al.,2003)。全ての水溶性試薬
はＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭ Ｎ
ａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ）中に溶解した。

５０ｍＵ／ｍｌの標的酵素（ヒト組み換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Resea
rch Laboratories,Inc.）の溶液、および、ａ）ビス−ジフルオロメチレンホスホネート
を有しており知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である１００・l化合物２（図１）(Johnson et a
l.,2002)またはｂ）ＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物である１００・lヒドロケイヒ酸(Al
drich)を不活性の中心ストリーム（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１２５ｍＭ Ｎａ
Ｃｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ）を有する２本の層流ストリームとしてのマイクロチャンネル中
を流動させることにより、これらを分離し、酵素と化合物が液滴マイクロカプセル形成よ
りも前に接触することを防止する(Song et al.,2003)。これらの３ストリームを連続的に
水非混和性のフッ化炭素キャリア流体（ＰＦＤ中９％（ｖ／ｖ）Ｃ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄ＯＨ）中
に注入する。水溶液用の導入チャンネルは５０・・SUP>2の広さとし、ＰＦＤ用チャンネ
ルは２８・黒揩ニする。０．６：０．３、１．０：０．６、１２．３：３．７、１０：６
および２０：６を含む種々のＰＦＤ／水の計量的流量（・^分）を使用でき、得られる流
量はそれぞれ１０、１９、１９０、１９０および３００ｍｍ／秒となる。チャンネルの全
幅を占有する水性マイクロカプセルはＰＦＤストリーム中の液滴の破壊により形成する(S
ong et al.,2003)。化合物２またはヒドロケイヒ酸の何れかを含有するマイクロカプセル
は、化合物２およびヒドロケイヒ酸を含有するシリンジを用いた注入を切り替えながら行
うことにより形成できる。

液滴形成地点のすぐ下流のチャンネルは１ｍｍの距離に渡りピーク間の距離５０・高ナ
旋廻している。これにより混乱移流によるマイクロカプセルの内容物の急速な混合が起こ
る(Song et al.,2003)。この地点の後、マイクロカプセルは長さ６０ｃｍのマイクロチャ
ンネルを経由して１分間まで流動する（これにより阻害剤の結合を可能とする）。次にこ
のマイクロチャンネルを上記した通り形成したＰＦＤ中９％（ｖ／ｖ）Ｃ₆Ｆ₁₁Ｃ₂Ｈ₄Ｏ
Ｈ中に水性マイクロカプセルを含有する６０ラ５０・・SUP>2マイクロチャンネルと合流
させる。これらのより大きいマイクロカプセルは２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４、１
２５ｍＭ ＮａＣｌ、１ｍＭ ＥＤＴＡ中の蛍光発生ＰＴＰ１Ｂ基質６，８−ジフルオロ−
４−メチルウンベリフェリルホスホネート（ＤｉＦＭＵＰ）(Molecular Probes)を含有す
る。マイクロチャンネルの間の注入の後、拡張した主チャンネルは１００ラ５０・・SUP>
2であり、マイクロカプセルはチャンネルをブロックせず、大型のマイクロカプセル（Ｄ
ｉＦＭＵＰを含有）が小型のマイクロカプセル（ＰＴＰ１Ｂおよび化合物を含有）と合体
するまで異なる速度で移動する(Song et al.,2003)。大型および小型のマイクロカプセル
の生成の頻度は、各大型マイクロカプセルが融合すべき小型マイクロカプセルを有するよ
うに、等しくする。融合したマイクロカプセルは長さ６０ｃｍのマイクロチャンネルを経
由して２分間まで流動する。ＤｉＦＭＵＰ（励起／発光最大３５８／４５２ｎｍ；青色蛍
光）の生成によるマイクロカプセルの蛍光はエピ蛍光顕微鏡を用いて測定する。主に、青
色蛍光を示すマイクロカプセルがヒドロケイヒ酸を含有するものであり、化合物２を含有
するマイクロカプセルはＰＴＰ１Ｂの阻害により低い蛍光を示す。

［実施例６：マイクロビーズへの化合物ライブラリの結合］
表面上にカルボキシレート官能基を有する直径５．５・高フポリスチレンマイクロビー
ズはオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り
込みの結果として光学的にタグ付けされた形態で市販されている(www.luminexcorp.com)(
Fulton et al.,1997)。各々が独特の光学的シグネチャー(www.luminexcorp.com)を有する
このようなビーズ１００個のセットを過剰なエチレンジアミンおよびＥＤＣ（塩酸１−エ
チル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド(Pierce)）でHermanson,1996
に記載の通り修飾し、表面に第１アミノ基を形成した。次に上記した通りＥＤＣを用いて
アミド結合を形成することにより、光分解性のリンカー４−（４−ヒドロキシメチル−２
−メトキシ−５−ニトロフェノキシ）ブタン酸(NovaBiochem)(Holmes and Jones,1995)を
ビーズに結合させる。次に、リンカーアルコールと反応させることによりカルボン酸有機
ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来の１００種の異なるカルボン酸をビーズ
にカップリングさせてカルボキシレートエステルを形成し、１００種の異なる光学的にタ
グ付けされたビーズの各々が異なるカルボン酸にカップリングし、そして各ビーズがカル
ボン酸〜１０⁶分子で誘導体化されるようにする。Ｂ１００ＡＰ３５４ｎｍＵＶランプ（
ＵＶＰ）を用いて〜５ｃｍの距離から氷上４分間照射することによりカルボン酸としてビ
ーズから化合物を放出させる。

［実施例７：マイクロビーズに結合した化合物を用いた酵素タンパク質チロシンホスファ
ターゼ１Ｂ（ＰＴＰ１Ｂ）の阻害剤のスクリーニング］
ＰＴＰ１Ｂはインスリンおよびレプチンのシグナル伝達の負の調節物質である。インス
リンおよびレプチンに対する耐性はII型真性糖尿病および肥満の指標であり、従ってＰＴ
Ｐ１Ｂは糖尿病および肥満の治療のための魅力的な薬剤標的である(Johnson et al.,2002
)。表面上にカルボキシレート官能基を有する直径５．５・高フポリスチレンマイクロビ
ーズはオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取
り込みの結果として光学的にタグ付けされた形態で市販されている(www.luminexcorp.com
)(Fulton et al.,1997)。まず、マイクロビーズ上のカルボキシレート官能基を実施例６
の場合と同様にエチレンジアミンおよびＥＤＣを用いて第１アミンに変換する。次にＰＴ
Ｐ１Ｂのホスホペプチド基質であるウンデカペプチドＥＧＦＲ_988-998（ＤＡＤＥｐＹＬ
ＩＰＱＱＧ）(Zhang et al.,1993)をＥＤＣを用いて表面アミノ基を介してマイクロビー
ズの両方のセットにカップリングさせる。このペプチドはカルボキシレート−Ｏ−アリル
エステルを用いた側鎖カルボキシレート基上の直角保護を用いてSieber Amide樹脂（９−
Ｆｍｏｃ−アミノ−キサンテン−３−イルオキシ−Merrifield樹脂）(Novabiochem)上の
固相合成により作成する。テトラデカンジ酸からなるリンカーをＮ末端にカップリングし
、１％ＴＦＡを用いてビーズからペプチドを脱離させ、Ｃ末端アミドを有するペプチドを
得る。ペプチドをリンカーを介してビーズにカップリングさせ（ＥＤＣ使用）、ビーズ当
たり〜１０⁵ペプチドを得る。次に実施例６に記載の通り光化学分解性リンカー４−（４
−ヒドロキシメチル−２−メトキシ−５−ニトロフェノキシ）ブタン酸を結合することに
より残余の表面アミノ基を修飾する。次にペプチドの側鎖カルボキシレート上の保護基を
Ｐｄ（Ｐｈ₃）₄／ＣＨＣｌ₃／ＨＯＡｃ／Ｎ−メチルモルホリンを用いて脱離させる。第
１のセットのマイクロビーズを知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤である化合物である３−（４−
ジフルオロホスホノメチルフェニル）プロパン酸（化合物１、図１）で誘導体化する(Joh
nson et al.,2002)。第１のセットのビーズとは別の光学的タグを有する第２のセットの
ビーズはＰＴＰ１Ｂ阻害剤ではない化合物であるヒドロケイヒ酸(Aldrich)で誘導体化す
る。各々の場合において、実施例６に記載の通り、化合物はリンカーアルコールと反応さ
せることによりカップリングしてカルボキシレートエステルを形成する。各マイクロビー
ズは〜１０⁶分子で誘導体化する(Fulton et al.,1997)。

次にマイクロビーズを図２に示す方法を用いてスクリーンする。２セットのマイクロビ
ーズを１：１００〜１：１（化合物１ビーズ：ヒドロケイヒ酸ビーズ）の範囲の比で混合
し、合計１０⁸マイクロビーズをＰＴＰ１Ｂ活性に適合した緩衝液（２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ
、ｐＨ７．４、１２５ｍＭ ＮａＣｌ、１０％グリセロール、１ｍＭ ＥＤＴＡ）(Doman e
t al.,2002)中、氷上（反応を防止するため）で、１０ｎＭの濃度の標的酵素（ヒト組み
換えＰＴＰ１Ｂ、残基１〜３２２；Biomol Research Laboratories,Inc.）と混合する。
次にシングルのビーズおよび標的酵素（ＰＴＰ１Ｂ）を、油中水エマルジョンを形成（や
はり氷上）することによりマイクロカプセル内に共局在化させる。ビーズの濃度は大部分
のマイクロカプセルが１個または０個のビーズを含有するようにする。化合物を光化学的
（実施例６に記載）に放出させ、温度を２５に上昇させる。阻害剤は生成物（脱ホスホリ
ル化ペプチド）に変換される基質の量を低減する。エマルジョンを４に冷却し、Griffith
s and Tawfik,2003に記載の通り破壊して１００・lバナジン酸塩中にいれ、反応を停止さ
せる(Harder et al.,1994)。製造元の取扱説明書に従って緑色（５３０ｎｍ）蛍光色素フ
ルオレセインイソチオシアネートで標識した抗基質（抗ホスホチロシン）抗体（マウスモ
ノクローナルＩｇＧ_2bＰＹ２０，(Santa Cruz)）で標識した後、FACScan(Becton-Dickins
on)、FACScalibur(Becton-Dickinson)またはMoFlo(Cytomation)フローサイトメトリーを
用いて３色フローサイトメトリーによりビーズを分析し、阻害の程度およびビーズ上の化
合物を同時に測定する。主に、ＰＴＰ１Ｂ阻害剤でコーティングされたマイクロビーズ上
のみペプチドの脱ホスホリル化が観察され、他のマイクロビーズでは観察されなかった。

［実施例８：マイクロビーズに結合した化合物ライブラリからのＰＴＰ１Ｂ阻害剤のスク
リーニング］
表面上にカルボキシレート官能基を有し、各々がオレンジ色（５８５ｎｍ）および赤色
（＞６５０ｎｍ）の蛍光色素の厳密な比の取り込み(Fulton et al.,1997)の結果として独
特の光学的シグネチャーを有する(www.luminexcorp.com)直径５．５・高フポリスチレン
マイクロビーズ１００個のセットをＰＴＰ１Ｂのホスホペプチド基質であるウンデカペプ
チドＥＧＦＲ_988-998（ＤＡＤＥｐＹＬＩＰＱＱＧ）(Zhang et al.,1993)および光化学的
に切断できるリンカーを介して各々結合した１００種の異なるカルボン酸を用いて、実施
例７に記載の通り誘導体化する。これらのカルボン酸の１つは知られたＰＴＰ１Ｂ阻害剤
である化合物である３−（４−ジフルオロホスホノメチルフェニル）プロパン酸（化合物
１、図１）である(Johnson et al.,2002)。他の９９種のカルボン酸は実施例６と同様に
カルボン酸有機ビルディングブロックライブラリ(Aldrich)由来である。次に１００ビー
ズセットの各々の等しい数量を混合し、実施例７に記載の通りスクリーニングする。主に
、ＰＴＰ１Ｂ阻害剤の３−（４−ジフルオロホスホノメチルフェニル）プロパン酸（化合
物１、図１）でコーティングされたマイクロビーズ上のみペプチドの脱ホスホリル化が観
察され、他の化合物でコーティングされたマイクロビーズでは観察されなかった。

［実施例９：フッ化炭素中水エマルジョンにおける小型分子のコンパートメント化］
９５％（ｖ／ｖ）パーフルオロオクチルブロミド、溶液中目的の分子を含有する５％（
ｖ／ｖ）リン酸塩緩衝食塩水、および、界面活性剤としての２％（ｗ／ｖ）Ｃ₈Ｆ₁₇Ｃ₁₁
Ｈ₂₂ＯＰ（Ｏ）［Ｎ（ＣＨ₂ＣＨ₂）₂Ｏ］₂（Ｆ８Ｈ１１ＤＭＰ）を含有するフッ化炭素中
水エマルジョンを１４・tィルター(Osmonics)を通過させる押し出し（１５回）によるか
、または、５ｍｍの分散ツールでUltra-TurraxT8ホモゲナイザー（ＩＫＡ）を用いながら
25,000r.p.mで５分間ホモゲナイズすることにより、本質的にSadtler et al.,1996に記載
の通り形成した。１００・香`２ｍＭの濃度で水相中に溶解した一連の小型蛍光分子を含
有するエマルジョンを作成した。カルセイン、テキサスレッド、フルオレセイン、クマリ
ン１０２、７−ヒドロキシクマリン−３−カルボン酸および７−ジエチルアミノ−４−メ
チルクマリン（クマリン１）を含むこれらの分子は、分子量２０３〜６２５ＤａおよびＳ
ＲＣのLogKow/KowWinプログラム(Meylan and Howard,1995)を用いて計算した場合に０．
４９〜４．０９の範囲のＬｏｇＰ値を有していた。異なる色の蛍光色素を含むエマルジョ
ンを振とう攪拌により混合した。混合されたエマルジョンのエピ蛍光顕微鏡観察によれば
コンパートメント化が観察された。混合後２４時間にはコンパートメント間の交換は観察
されなかった（図３参照）。

上記した本明細書において言及した全ての出版物および該出版物中に引用されている参
考文献は参照により本明細書に組み込まれる。本発明の記載した方法および系の種々の変
更および変形は本発明の範囲および精神を逸脱することなく当業者には明らかとなる。本
発明は特定の好ましい実施形態との関連において説明してきたが、請求項に記載した本発
明はそのような特定の実施形態に限定されない。実際、分子生物学または関連の分野の当
業者には自明である本発明の実施のための記載した様式の種々の変更は添付する請求項の
範囲内であることを意図するものである。

Claims (108)

1. 化合物のレパートリー中において、所望の活性を有する１以上の化合物を識別する方法
   であって、
   ａ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数の
   コピーで示されるように、化合物をマイクロカプセル中にコンパートメント化するステッ
   プと；
   ｂ）所望の活性を有する化合物を識別するステップと
   を含む方法。
2. ステップ（ａ）が、個々の化合物を含む個別のエマルジョンコンパートメントを形成す
   るステップと、エマルジョンコンパートメントを混合して、エマルジョン化された化合物
   レパートリーを形成するステップであって、任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レ
   パートリーのサブセットが複数のコピーで示される、ステップとを含む、請求項１に記載
   の方法。
3. ステップ（ａ）が、
   ｃ）任意の１つのマイクロビーズ上において、レパートリーのサブセット１つのみが示
   されるように、化合物レパートリーをマイクロビーズ上に付着させるステップと；
   ｄ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットが複数のコピ
   ーで示されるように、マイクロビーズをマイクロカプセルにコンパートメント化するステ
   ップと
   を含む、請求項１に記載の方法。
4. 所望の活性が、結合活性および標的の活性のモジュレーションからなる群より選択され
   る、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
5. 結合活性が、標的に対する結合である、請求項４に記載の方法。
6. モジュレートされた活性が、結合活性である、請求項４に記載の方法。
7. モジュレートされた活性が、触媒活性である、請求項４に記載の方法。
8. 化合物が標的と反応して反応生成物を生成する、請求項１から３のいずれかに記載の方
   法。
9. 化合物が、切断不能なリンカーを介してマイクロビーズへ結合している、請求項３また
   はそれに従属するいずれかに記載の方法。
10. 化合物が、切断可能なリンカーを介してマイクロビーズへ結合している、請求項３また
    はそれに従属するいずれかに記載の方法。
11. 化合物が、光化学的に切断可能なリンカーを介してマイクロビーズへ結合している、請
    求項１０に記載の方法。
12. 化合物が、切断可能なリンカーおよび切断不能なリンカーの組み合わせによってマイク
    ロビーズへ結合している、請求項３またはそれに従属するいずれかに記載の方法。
13. 標的が、化合物と一緒にマイクロカプセルにコンパートメント化される、請求項１〜１
    ２のいずれかに記載の方法。
14. 所望の活性を有する化合物が、それに関連するマイクロビーズもしくはマイクロカプセ
    ルにおける、マイクロビーズもしくはマイクロカプセルの識別、分類または選択を可能と
    する変化を引き起こす、請求項１〜１３のいずれかに記載の方法。
15. 化合物がマイクロビーズに結合しており、マイクロビーズの単離が可能となるように、
    マイクロカプセル内の所望の活性が、直接的または間接的に、化合物が付着しているマイ
    クロビーズの修飾をもたらす、請求項１４に記載の方法。
16. 標的がマイクロビーズに結合しており、マイクロビーズの単離が可能となるように、マ
    イクロカプセル内で所望の活性を有する化合物が、直接的または間接的に、標的に結合す
    る、請求項１５に記載の方法。
17. マイクロビーズがアフィニティー精製によって単離される、請求項１５または請求項１
    ６に記載の方法。
18. 基質がマイクロカプセル内に存在し、マイクロカプセル内の化合物の所望の活性が、直
    接的または間接的に、基質の生成物への転換の調節をもたらす、請求項７に記載の方法。
19. 基質が、標的の触媒作用によって生成物へ転換させられる、請求項１８に記載の方法。
20. 基質および生成物が、相違する光学特性を有する、請求項１８または１９に記載の方法
    。
21. 基質および生成物が、相違する蛍光特性を有する、請求項２０に記載の方法。
22. 基質がマイクロビーズへ結合しており、マイクロカプセル内の化合物の所望の活性が、
    直接的または間接的に、基質の生成物への転換の調節をもたらし、生成物がマイクロビー
    ズの一部に残存し、その識別、および任意選択的にその単離を可能にする、請求項１８に
    記載の方法。
23. 生成物、および任意選択的に未反応基質が、その後マイクロカプセル内のマイクロビー
    ズと複合体化される、請求項１８に記載の方法。
24. 所望の活性が、生成物への基質の転換を増強する、請求項１８に記載の方法。
25. 所望の活性が、生成物への基質の転換を阻害する、請求項１８に記載の方法。
26. マイクロカプセル内の化合物の所望の活性が、直接的または間接的に、生成物の生成を
    もたらし、生成物が、その後マイクロビーズと複合体化し、その単離を可能にする、請求
    項７に記載の方法。
27. 所望の活性を有する化合物が、マイクロカプセルの識別、分類または選択を可能にする
    マイクロカプセルの変化をもたらす、請求項１から１４のいずれかに記載の方法。
28. マイクロカプセル内の化合物の所望の活性が、マイクロカプセルの光学特性の変化をも
    たらす、請求項１〜２７のいずれかに記載の方法。
29. マイクロカプセルが、それらの蛍光の変化の検出によって識別される、請求項２８に記
    載の方法。
30. 蛍光の変化が、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）に起因する、請求項２９に記載の
    方法。
31. マイクロカプセル内の化合物が、マイクロカプセルの光学特性の相違によって識別され
    る、請求項２８に記載の方法。
32. マイクロカプセルの光学特性の相違が、蛍光の相違である、請求項３１に記載の方法。
33. マイクロカプセルの蛍光の相違が、量子ドットの存在に起因する、請求項３２に記載の
    方法。
34. 化合物が、相違するマイクロカプセルにおいて相違する濃度で存在する、請求項１〜３
    ３のいずれかに記載の方法。
35. マイクロカプセル内の化合物の濃度が、マイクロカプセルの光学特性の相違によって識
    別される、請求項３４に記載の方法。
36. マイクロカプセルの光学特性の相違が、蛍光の相違である、請求項３５に記載の方法。
37. マイクロカプセルの蛍光の相違が、量子ドットの存在に起因する、請求項３６に記載の
    方法。
38. マイクロカプセル内の標的が、マイクロカプセルの光学特性の相違によって識別される
    、請求項２８に記載の方法。
39. マイクロカプセルの光学特性の相違が、蛍光の相違である、請求項３８に記載の方法。
40. マイクロカプセルの蛍光の相違が、量子ドットの存在に起因する、請求項３９に記載の
    方法。
41. マイクロカプセルの識別が、フローサイトメトリーによる、請求項２８から４０のいず
    れかに記載の方法。
42. マイクロカプセルの分類が、蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）を用いて実施される
    、請求項４１に記載の方法。
43. マイクロカプセルが、油中水型エマルジョンから水中油中水型エマルジョンへの転換後
    に蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）を用いて分類される、請求項４２記載の方法。
44. マイクロビーズの修飾が、その光学特性の変化を含む、請求項１５に記載の方法。
45. マイクロビーズの光学特性の相違が、蛍光の相違である、請求項４４に記載の方法。
46. マイクロビーズ上の化合物が、マイクロビーズの光学特性の相違によって識別される、
    請求項４４に記載の方法。
47. マイクロビーズの光学特性の相違が、蛍光の相違である、請求項４６に記載の方法。
48. マイクロビーズの蛍光の相違が、量子ドットの存在に起因する、請求項４７に記載の方
    法。
49. マイクロビーズが、非磁性、磁性または常磁性である、請求項３に記載の方法。
50. マイクロビーズが、それらの蛍光の変化の検出によって分類される、請求項４５に記載
    の方法。
51. マイクロビーズの識別が、フローサイトメトリーによる、請求項５０に記載の方法。
52. マイクロビーズの分類が、蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）を用いて実施される、
    請求項５０に記載の方法。
53. 蛍光の変化が、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）に起因する、請求項５０に記載の
    方法。
54. マイクロビーズの修飾により、マイクロビーズの光学特性の変化を誘導するように、マ
    イクロビーズがマイクロカプセルの外側でさらに修飾されることが可能になる、請求項４
    ５に記載の方法。
55. マイクロビーズの光学特性の変化が、特徴的なの光学特性を有する化合物のマイクロビ
    ーズへの結合に起因する、請求項４５に記載の方法。
56. マイクロビーズの光学特性の変化が、化合物の特徴的なの光学特性を有する標的への結
    合に起因する、請求項４５または４６に記載の方法。
57. マイクロビーズの光学特性の変化が、標的に結合したときの化合物の光学特性の変化に
    起因する、請求項４５または４６に記載の方法。
58. マイクロビーズの光学特性の変化が、化合物が結合したときの標的の光学特性の変化に
    起因する、請求項４５または４６に記載の方法。
59. マイクロビーズの光学特性の変化が、結合している標的および化合物両方の光学特性の
    変化に起因する、請求項４５または４６に記載の方法。
60. 所望の活性を有する化合物が、標的の変化を引き起こすように作用し、マイクロビーズ
    の光学特性の変化が、標的と標的に対する化合物の作用での生成物との相違する光学特性
    に起因する、請求項４５または４６に記載の方法。
61. 所望の活性を有する化合物が、光学特性を変化させずに標的の変化を引き起こすように
    作用し、標的ではなく作用での生成物だけがマイクロビーズと結合または反応し、それに
    よってマイクロビーズの光学特性を変化させる、請求項４５または４６に記載の方法。
62. 別の試薬が、マイクロビーズに結合した調節された反応の（基質ではなく）生成物に特
    異的に結合または特異的に反応し、それによってマイクロビーズの光学特性を変化させる
    、請求項４５また４６に記載の方法。
63. 別の試薬が、マイクロビーズに結合した調節された反応の基質（生成物ではなく）に特
    異的に結合特異的に反応し、それによってマイクロビーズの光学特性を変化させる、請求
    項４５また４６に記載の方法。
64. 化合物の非所望の活性が、所望の活性から生じる変化とは区別しえるマイクロビーズも
    しくはマイクロカプセルの変化をもたらす、請求項１〜６３のいずれかに記載の方法。
65. 非所望の活性の結果として生じる変化が、マイクロビーズまたはマイクロカプセルを消
    極的に選択するために使用される、請求項６４に記載の方法。
66. 反応特異性を向上させるために、消極的な選択を積極的な選択と組み合わせる、請求項
    ６５に記載の方法。
67. 改良された反応特異性が、結合特異性における改良である、請求項６６に記載の方法。
68. 改良された反応特異性が、標的に対する位置選択性および／または立体選択性の改良で
    ある、請求項６６に記載の方法。
69. 所望の化合物の活性によって直接的または間接的に修飾されたマイクロビーズが、さら
    にチラミドシグナル増幅（ＴＳＡ(商標)；ＮＥＮ社）によって修飾されて、マイクロビー
    ズの光学特性の変化を直接的または間接的に生じさせ、それによりそれらの識別および任
    意選択的に単離が可能となる請求項４５から６８のいずれかに記載の方法。
70. 各マイクロビーズまたはマイクロカプセルが、２以上の化合物を含み、マイクロビーズ
    またはマイクロカプセルを選択するために、各化合物が所望の活性を有していなければな
    らない、請求項１〜６９のいずれかに記載の方法。
71. １以上の化合物が、低分子量化合物である、請求項１〜７０のいずれかに記載の方法。
72. レパートリーのサブセットが、単一化合物である、請求項１〜７１のいずれかに記載の
    方法。
73. 各マイクロカプセルまたはマイクロビーズが、それと結合した単一化合物の複数の分子
    を有する、請求項７２に記載の方法。
74. ステップ（ａ）から（ｄ）の１つ以上を反復して繰り返すステップをさらに含む、請求
    項１〜７３のいずれかに記載の方法。
75. マイクロカプセル化が、油中水型エマルジョンを形成するステップによって達成される
    、請求項１〜７４のいずれかに記載の方法。
76. 油中水型エマルジョンが、微小流体システムを用いて作成される、請求項７５に記載の
    方法。
77. エマルジョンが、不混和性液体の共流動ストリーム内の水性液滴の破裂によって形成さ
    れる、請求項７６に記載の方法。
78. 微小流体チャネル内の油のストリーム内に分散した水性微小液滴の層流によって、マイ
    クロカプセルが分析のために輸送される、請求項７６に記載の方法。
79. マイクロカプセルが、微小流体チャネル内の油のストリーム内に分散した水性微小液滴
    である、請求項７６に記載の方法。
80. マイクロカプセル内の化合物が、微小流体チャネル内の他の微小液滴に対するマイクロ
    カプセルの相対的位置によって識別される、請求項７６に記載の方法。
81. マイクロカプセル内の化合物の濃度が、微小流体チャネル内の他の微小液滴に対するマ
    イクロカプセルの相対的位置によって識別される、請求項７６に記載の方法。
82. マイクロカプセル内の標的が、微小流体チャネル内の他の微小液滴に対するマイクロカ
    プセルの相対的位置によって識別される、請求項７６に記載の方法。
83. 識別されたマイクロカプセルが、微小流体デバイスを用いて分類される、請求項１〜８
    ２のいずれかに記載の方法。
84. マイクロカプセル化が、フッ化炭素中水型または過フッ化炭素中水型エマルジョンを形
    成するステップによって達成される、請求項７５に記載の方法。
85. フッ化炭素が、ペルフルオロオクチルブロミドまたはペルフルオロオクチルエタンであ
    る、請求項８４に記載の方法。
86. エマルジョンが、Ｆ−アルキルジモルホリノホスフェートを用いて形成される、請求項
    ８４に記載の方法。
87. Ｆ−アルキルジモルホリノホスフェートが、一般式Ｃ_nＦ_2n+1Ｃ_mＨ_2mＯＰ（Ｏ）［Ｎ（
    ＣＨ₂ＣＨ₂）₂Ｏ］₂を有する、請求項８６に記載の方法。
88. Ｆ−アルキルジモルホリノホスフェートが、Ｃ₈Ｆ₁₇Ｃ₁₁Ｈ₂₂ＯＰ（Ｏ）［Ｎ（ＣＨ₂Ｃ
    Ｈ₂）₂Ｏ］₂である、請求項８７に記載の方法。
89. マイクロカプセルの内部環境が、油相へ１以上の試薬を添加することによって修飾され
    る、請求項１〜８８のいずれかに記載の方法。
90. 化合物が、相違する光学特性を有するビーズへカップリングされている、請求項１〜８
    ９のいずれかに記載の方法。
91. ビーズが、相違する蛍光特性を有する、請求項９０に記載の方法。
92. ビーズの相違する光学特性が、ビーズへの相違するレベルの２以上の蛍光色素の取り込
    みに起因する、請求項９０に記載の方法。
93. ビーズの相違する光学特性が、相違する発光スペクトルを有する量子ドットの相違する
    数での取り込みに起因する、請求項９０に記載の方法。
94. ビーズの相違する光学特性が、ビーズへ結合した化合物を識別するために使用される、
    請求項９０に記載の方法。
95. 単離されたビーズ上の化合物が、ビーズから化合物を放出させ、直接分析することによ
    って識別される、請求項１〜９４のいずれかに記載の方法。
96. 単離されたビーズ上の化合物が、質量分光法によって識別される、請求項９５に記載の
    方法。
97. 請求項１〜９６のいずれかの方法によって単離された生成物。
98. 化合物を調製する方法であって、
    （ａ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数
    のコピーで示されるように、化合物をマイクロカプセルにコンパートメント化するステッ
    プと；
    （ｂ）所望の活性を有する化合物を識別するステップと、
    （ｃ）所望の活性を有する化合物を識別および生成するステップと
    を含む方法。
99. 化合物を調製する方法であって、
    （ａ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数
    のコピーで示されるように、化合物をマイクロカプセルにコンパートメント化するステッ
    プと；
    （ｂ）所望の活性を有する１以上の化合物を含有するマイクロカプセルを、それらの光
    学特性の変化を用いて識別、および任意選択的に分類するステップと；
    （ｃ）所望の活性を有する化合物を識別および生成するステップと
    を含む方法。
100. 標的の活性をモジュレートさせることのできる１以上の化合物をスクリーニングする方
     法であって、
     （ａ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数
     のコピーで示されるように、化合物をマイクロカプセルにコンパートメント化するステッ
     プと；
     （ｂ）所望の活性を有する１以上の化合物を含有するマイクロカプセルを、それらの光
     学特性の変化を用いて識別、および任意選択的に分類するステップと；
     （ｃ）所望の活性を有する標的を１以上の化合物と接触させ、１以上の化合物による標
     的の活性のモジュレーションを監視するステップと
     を含む方法。
101. 標的を調製する方法であって、
     （ａ）標的に対する合成プロトコールを供するステップであって、少なくとも１つのス
     テップが化合物によって促進される、ステップと；
     （ｂ）このステップを促進する化合物の変異体を調製するステップと；
     （ｃ）任意の１つのマイクロカプセルにおいて、レパートリーのサブセットのみが複数
     のコピーで示されるように、化合物をマイクロカプセルにコンパートメント化するステッ
     プと；
     （ｄ）所望の活性を有する１以上の化合物を含有するマイクロカプセルを、それらの光
     学特性の変化を用いて識別、および任意選択的に分類するステップと；
     （ｅ）合成における関連するステップを促進するために、（ｄ）において識別された化
     合物を用いて標的を調製するステップと
     を含む方法。
102. 化合物がマイクロビーズに結合しており、任意選択的に化合物がマイクロカプセル内の
     マイクロビーズから放出させられる、請求項９８から１０２のいずれかに記載の方法。
103. 化合物および標的が最初は、その後に融合される相違するマイクロカプセルに存在する
     、請求項１３に記載の方法。
104. 化合物を含有するマイクロカプセルが、分割して２つ以上のマイクロカプセルを生成す
     る、請求項１〜９６および９８〜１０３のいずれかに記載の方法。
105. 標的を含有するマイクロカプセルが、分割して２つ以上のマイクロカプセルを生成する
     、請求項１３に記載の方法。
106. １つ以上の細胞が、マイクロカプセル内に存在する、請求項１〜９６および９８〜１０
     ３のいずれかに記載の方法。
107. 化合物が、細胞内の標的の活性をモジュレートする、請求項１０６に記載の方法。
108. 化合物が、細胞の活性をモジュレートする、請求項１０７に記載の方法。

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