JP2002542203A - ワクチン - Google Patents
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Abstract
Description
本発明のアジュバント組成物は、サポニンと免疫刺激性オリゴヌクレオチドを含
み、場合によりさらに担体を含む併合物を含む。本発明により、本発明のアジュ
バント組成物及び少なくとも1の抗原を含むワクチンも提供される。さらに、本
発明のアジュバント組成物及びワクチンの製造方法、並びに医薬としてのそれら
の使用も提供される。さらに、本発明は、本発明のワクチンの非経口又は粘膜投
与による病気にかかり易い又はかかった個体の治療方法も提供する。
レオチドは全身経路及び粘膜経路により投与されるときアジュバントであるとい
うことが、本分野において知られている(WO96/02555, EP 468520, Davis et al
., J. Immunol, 1998, 160 (2) : 870-876; McCluskie and Davis, J. Immunol.
, 1998, 161 (9) : 4463-6)。CpGは、DNA中に存在するシトシン−グアノ
シン・ジヌクレオチド・モチーフのための略号である。歴史的には、BCGのD
NA画分が抗腫瘍効果を発揮することができるということが観察された。さらな
る研究において、BCG遺伝子配列由来の合成オリゴヌクレオチドが(インビト
ロ及びインビボの両者において)免疫刺激効果を誘導することができることが示
された。上記研究の著者は、中央CGモチーフを含む特定のパリンドローム配列
がこの活性を担持すると結論した。免疫刺激におけるこのCGモチーフの中心的
役割は、Kreig, Nature 374, p546 1995により刊行物中に、その後に明らかにさ
れた。詳細な分析は、このCGモチーフが特定の配列文脈内に存在しなければな
らないこと、そしてこのような配列はバクテリアDNAにおいては一般的である
が脊椎動物DNAにおいては稀であることが示されている。上記免疫刺激性配列
は、しばしば:プリン、プリン、C,G、ピリミジン、ピリミジンであり、ここ
で、上記ジヌクレオチドCGモチーフはメチル化されていないが、他のメチル化
されていないCpG配列は免疫刺激性であることが知られており、そして本発明
において使用されうる。
ic)配列が存在する。これらのモチーフのいくつかは、1のモチーフの反復で
あるか異なるモチーフの組合せであるかを問わず、同一ヌクレオチド内に存在す
ることができる。オリゴヌクレオチドを含有する上記免疫刺激性配列の中の1以
上の存在は、(インターフェロンγを産生し、そして細胞毒性活性をもつ)ナチ
ュラル・キラー細胞、及びマクロファージを含む、さまざまな免疫サブセットを
活性化することができる(Wooldrige et al Vol 89 (no. 8), 1977)。但し、こ
のコンセンサス配列をもたない他のメチル化されていないCpG含有配列は今日
免疫刺激性であることが示されている。
55; McCluskie and Davis 、前掲)とともに遊離溶液中で投与され、又は抗原と
共有結合され(PCT公開番号WO98/16247)、又は水酸化アルミニウ
ムの如き担体と配合される((肝炎表面抗原)Davis et al 、前掲;Brazolot-M
illan et al., Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 1998, 95 (26), 15553-8)。
ological and pharmacological activities of saponins, Phytomedicine vol 2
pp 363-386)中に教示されている。サポニンは、植物及び海洋動物界に広く分布
するステロイド又はトリテルペン・グリコシドである。サポニンは、水中コロイ
ド溶液を形成して振とうの間に発泡し、そしてコレステロールを沈澱させること
で有名である。サポニンが細胞膜付近にあるとき、それらは、膜が破けることを
引き起こす、膜内の多孔様構造を生じさせる。赤血球の溶血は、この現象の一例
であり、これは全てではないが特定のサポニンの特性である。
。個々のサポニンのアジュバント及び溶血活性は、本分野において詳しく研究さ
れている(Lacaille-Dubois and Wagner、前掲)。例えば、(南アメリカの木、
キラヤ・サポナリア・モリナ(Quillaja Saponaria Molina)の樹皮由来の)クイ
ルA(Quil A)、及びその画分が、米国特許第5,057,540号、及
び“Saponins as vaccine adjuvants”, Kensil, C.R., Crit Rev Ther Drug Ca
rrier Syst, 1996, 12 (1-2) : 1-55 ;及びEP 0 362 279 B1中
に記載されている。
子状構造は、溶血性であり、そしてワクチンの製造において使用されてきた(Mo
rein, B., EP 0 109 942 B1)。これらの構造は、アジュバント活性をもつことが
報告されている(EP 0 109 942 B1;WO96/11711)。
強力な全身的アジュバントとして記載されており、そしてそれらの製法は、米国
特許第5,057,540号、及びEP 0 362 279 B1中に開示さ
れている。上記文献中には、全身的ワクチンのための強力なアジュバントとして
作用するQS7(Quil Aの非溶血性画分)の使用も記載されている。QS
21の使用は、さらにKensil et al. (1991. J. Immunology vol 146, 431-437)
中に記載されている。QS21とポリソルベート又はシクロデキストリンの併合
物も知られている(WO99/10008)。Quil Aの画分、例えば、Q
S21及びQS7を含む粒子状アジュバント系が、WO96/33739、及び
WO96/11711中に記載されている。
えば、ジプソフィラ(Gypsophila)及びサポナリア(Saponar
ia)由来のものを含む(Bomford et al., Vaccine, 10 (9) : 572-577, 1992)
。
ており、これは、免疫応答の誘導において成功の程度が異なっている。Quil
−Aサポニンは、抗原が鼻内に投与されるとき、免疫応答の誘導に対して効果を
もたないことが先に示されている(Gizurarson et al. 1994. Vacine Research
3, 23-29)。一方、他の著者は、成功をもって、上記アジュバントを使用してい
る(Maharaj et al., Can. J. Microbiol, 1986, 32 (5) : 414-20; Chavali an
d Campbell, Immunobiology, 174 (3) : 347-59)。Quil Aサポニンを含む
ISCOMsは、胃内及び鼻内ワクチン配合物中で使用されており、そしてアジ
ュバント活性を示している(McI Mowat et al., 1991, Immunology, 72, 317-32
2; McI Mowat and Donachie, Immunology Today, 12, 383-385)。
載されている(Sumino et al., J. Virol., 1998, 72 (6) : 4931-9; WO98/5641
5)。
、ケノポジウム・キノア(Chenopodium quinoa)サポニンは、鼻内ワクチン及び
胃内ワクチンの両者中で使用されている(Estrada et al., Comp. Immunol. Mic
robiol. Infect. Dis., 1998, 21 (3) : 225-36)。
めて強力なアジュバントであるという驚ろくべき発見に関する。従って、サポニ
ンと免疫刺激性オリゴヌクレオチドの併合物を含むアジュバント組成物が提供さ
れる。好ましくは、本発明のアジュバントは、担体をさらに含む。本発明の好ま
しい形態においては、上記アジュバント及びワクチン組成物中のサポニン及びオ
リゴヌクレオチドは、抗原特異的抗体の誘導においてシナルジスティックであり
、そしてTh1−型免疫系に一般に関係する免疫応答の誘導において強力である
。従って、上記アジュバント併合物は、疾患の免疫予防のために好適であるだけ
でなく、驚ろくべきことに、潜伏期の長いウイルス、バクテリア又は寄生生物感
染の如き疾患、そしてまた癌の如き慢性障害の免疫治療のためにも好適である。
オチドは、好ましくは、少なくとも3つ、より好ましくは少なくとも6以上のヌ
クレオチドにより分離された2以上のジヌクレオチドCpGモチーフを含む。本
発明のオリゴヌクレオチドは、典型的にはデオキシヌクレオチドである。好まし
い態様においては、上記オリゴヌクレオチド中のインターヌクレオチドは、ホス
ホロジチオエート、又はより好ましくはホスホロチオエート結合である。但し、
ホスホジエステルその他のインターヌクレオチド結合であって、混合インターヌ
クレオチド結合をもつオリゴヌクレオチドを含むものも本発明の範囲内にある。
ホスホロチオエート・オリゴヌクレオチド又はホスホロジチオエートの製造方法
は、US 5,666,153、US 5,278,302、及びWO95/2
6204中に記載されている。
くは、ホスホロチオエート修飾インターヌクレオチド結合を含む。
又は付加をもつ点で、上記好ましい配列を含みうる。
れたいずれかの方法により合成されうる(例えば、EP 468520)。便利
には、このようなオリゴヌクレオチドは、自動合成装置を用いて合成されること
ができる。
ヌクレオチドである。好ましい態様においては、上記オリゴヌクレオチド内のイ
ンターヌクレオチド結合は、ホスホロジチオエート又はより好ましくはホスホロ
チオエート結合である。但し、ホスホジエステルも本発明の範囲内にある。異な
るインターヌクレオチド結合を含むオリゴヌクレオチド、例えば、混合ホスホロ
チオエート・ホスホジエステルも企図される。上記オリゴヌクレオチドを安定化
させる他のインターヌクレオチド結合も使用されうる。
57,540号及び“Saponins as vaccine adjuvants”, Kensil, C.R., Crit
Rev Ther Drug Carrier Syst, 1996, 12 (1-2) : 1-55;及びEP 0 362
279 B1中に記載された、Quil Aといわれる、Quillaja Saponaria M
olina の樹皮由来のものを含む。Quil Aの特に好ましい画分は、QS21
,QS7、及びQS17である。
れる他の好ましい溶血性サポニンである。エスシンは、セイヨウトチノキ(hors
e chestnut tree)、ラテン名:エスキュラス・ヒポカスタナム(Aesculus hippo
castanum)の種子中に生じるサポニンの混合物としてthe Merck index (12thed
: entry 3737)中に記載されている。その単離は、クロマトグラフィー及び精製
(Fiedler, Arzneimittel-Forsch. 4, 213 (1953))、及びイオン交換樹脂(Erbr
ing et al., US 3,238,190)により記載されている。エスシンα及びβの画分は
精製されており、そして生物学的に活性であることが示されている(Yoshikawa
M, et al. (Chem Pharm Bull (Tokyo) 1996 Aug; 44 (8) : 1454-1464))。β−
エスシン(β−escin)は、エスシン(aescin)としても知られてい
る。
igitonin)である。ディギトニンは、ディギタリス・パープレア(Di
gitalis purpurea)の種子由来であり、そしてGisvold et al.
, J. Am. Pharm. Assoc., 1934, 23, 664;及びRuhenstroth-Bauer, Physiol. C
hem., 1955, 301, 621中に記載される手順に従って精製される、サポニンとして
the Merck index (12th Edition, entry 3204)中に記載されている。その使用は
、コレステロール測定のための臨床試薬として記載されている。
担体と会合されて上記併合物アジュバント活性を高めることができるように、さ
らに担体を含むことができる。例えば、特に好ましい全身的ワクチンは、担体分
子を含む。
は粒子状担体、例えば、鉱物塩(例えば、非限定的に、アルミニウム又はカルシ
ウム塩を含む)、リポソーム、ISCOMs、エマルジョン(油/水、水/油、
水/油/水)、ポリマー(例えば、非限定的に、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、
ポリホスファジン、ポリアミノ酸、アルギネート、キトサン)又は微粒子に複合
体化されることができる。好ましくは、上記担体はカチオン性である。本発明の
ワクチンは、上記CpG−担体複合体と会合することができ、又は上記CpG−
担体複合体と会合することができない抗原をさらに含む。この場合、抗原は、遊
離の懸濁液であるか又は別個の担体と会合することができる。
き、又はコレステロール及び脂質と配合されるときISCOMs(EP 0 1
09 942 B1)又はリポソーム(WO96/33739)の如き大きな次
元の構造の形態で存在することができ、又は油/水エマルジョン(WO95/1
7210)の形態で存在することができる。上記サポニンは、好ましくは、金属
塩、例えば水酸化アルミニウム又はリン酸アルミニウムと会合されることができ
る(WO98/15287)。あるいは、上記サポニンは、キトサン(chit
osan)の如き粒子状担体と会合されることができる。上記サポニンは、乾燥
状態、例えば粉末において存在することもできる。それらが、ワクチン受容者の
粘膜表面に投与されるときの形態における最終配合品は、好ましくは、天然にお
いて溶血性である。このサポニンは、直接結合を介してか又は同一の粒子状担体
分子との共同相互作用(co−interaction)により上記抗原と物理
的に会合されてもされなくてもよい(GB9822712.7;WO98/16
247)。本発明のアジュバント又はワクチン中の上記CpG及びサポニンは、
それ自体、分離され又は会合されることができる。例えば、上記CpG及びサポ
ニンは、遊離懸濁液中にあることができ、又は担体、より好ましくは粒子状担体
、例えば、水酸化アルミニウムを介して、又はカチオン・リポソーム又はISC
OMにより、会合されることができる。
を含む群から選ばれる粒子状担体及びQS21と一緒になって、2つの隣接CG
モチーフ間に少なくとも3つ、好ましくは少なくとも6つのヌクレオチドを含む
1以上のCpGオリゴヌクレオチドから作られる。最も好ましくは、上記アジュ
バント組合せ物は、QS21、及び油/水エマルジョン又はDQを含む群から選
ばれる粒子状担体と混合されて、CpG2006(配列番号4)、又はCpG1
758(配列番号2)又はCpG1826(配列番号1)を含む。従って、特に
好ましいワクチンは、例えば、上記アジュバント組合せ物及び抗原を含む。本発
明の好ましいワクチンは、全身経路を通じて個体に投与された後に全身的免疫応
答を生成するために使用される。
両者として使用されうる。本発明の特別な形態においては、全身的又は非経口経
路、例えば、筋中、皮膚内、経皮、皮下、腹腔内又は静血内投与を通じて投与さ
れる全身的ワクチンが提供される。好ましい投与経路は、経皮経路を介する、例
えば、皮膚パッチによるものである。
皮下投与により上記ワクチンを投与することにより、疾患にかかり易い又はこれ
にかかった哺乳動物を保護し又は治療するために使用されることができる。上記
ワクチン調製物の全身的投与の方法は、慣用のシリンジ及びニードル、又は固体
ワクチンの弾道デリバリーのためにデザインされたデバイス(WO99/279
61)、又はニードルして圧力液体ジェット・デバイス(US 4,596,5
56;US 5,993,412)、又は経皮パッチ(WO97/48440;
WO98/28037)を含みうる。本発明は、皮膚に適用される抗原の免疫原
性を高めるためにも使用されうる(経皮又は(transdermd or transcutaneous)
デリバリーWO98/20734;WO98/28037)。それ故、本発明は
、本発明のワクチン又はアジュバント組成物で事前に満たされた全身投与のため
のデリバリー・デバイスを提供する。従って、個体における免疫応答を誘導する
方法であって、投与及び免疫刺激性オリゴヌクレオチド、サポニン、及び担体を
含むワクチンを、上記個体に投与することを含み、ここで、上記ワクチンが非経
口又は全身的経路を介して投与される、前記方法が提供される。免疫応答を誘導
する好ましい方法は、Quil A由来のサポニン、例えば、QS21、及び担
体、例えば、油/水エマルジョン、コレステロール含有リポソーム又はアルム(
alum)とともに、配列番号1,2,3,4又は5のオリゴヌクレオチドを含
むワクチンの投与を含む。
経口/栄養補給の又は鼻内経路を介しての投与により、病気にかかり易い又はか
かった哺乳動物を保護又は治療するために使用されうる。他の粘膜経路は、膣内
及び直腸内である。投与の好ましい粘膜経路は、鼻腔内ワクチン接種といわれる
鼻内経路を介するものである。鼻内ワクチン接種方法は本分野において周知であ
り、免疫化されるべき個体の上咽頭内への上記ワクチンの滴、スプレー、又は乾
燥粉砕形態の投与を含む。噴霧され又はエアロゾル化されたワクチン配合物も、
本発明の一部を形成する。腸溶配合物、例えば、経口投与のための胃耐性カプセ
ル及び粒剤、直腸又は膣投与のための坐剤も本発明の一部を形成する。
種を置き換えるために、ヒトにおける適用のために好適な粘膜アジュバントのク
ラスを表す。本発明の好ましい形態においては、免疫刺激性オリゴヌクレオチド
と組合せて、純粋なサポニン、例えば、Quil A、又はその誘導体であって
QS21を含むもの;エスシン;ディギトニン;又はギィプソフィラ(Gyps
ophila)又はケノポジウム・キノア(Chenopodiumu qui
noa)のサポニンが、全身的免疫応答を達成するための抗原の粘膜投与のため
のアジュバントとして使用されうる。
ることができる、ワクチンの配合物中で使用されうる。好ましくは、上記ワクチ
ンが粘膜投与のために使用されるとき、上記アジュバント組合せ物は、溶血性サ
ポニンを含む。
。本発明の意味においては、溶血性サポニン、又はサポニン調製物は、以下のア
ッセイを参照して測定されるであろう。
液化生理食塩水(PBS)で洗浄する。元の容量まで再懸濁させた後、上記血液
をPBS中でさらに10倍希釈する。
PBS 800μlに添加する。
、評価する。570nmにおいて光を吸収する赤上清の存在は、溶血の存在を示す
。
れる。
1%未満の濃度において赤血球を溶解する場合、溶血性である。参考として、Q
uil A,QS21,QS7、ディギトニン、及びβ−エスシンの実質的に純
粋なサンプルは、上記アッセイにおいて定義されるとき、全て溶血性サポニンで
ある。このような生物学的アッセイの個有の実験バラツキ内で、本発明のサポニ
ンは、好ましくは、約0.5〜0.00001%の間の、より好ましくは0.0
5〜0.00001%の間の、さらにより好ましくは0.005〜0.0000
1%の間の、そして最も好ましくは0.001〜0.0004%の間の溶血活性
をもつ。理想的には、上記サポニンは、QS21のものと同様の(すなわち、1
0倍差異内の)溶血活性をもたなければならない。
場合、医薬として許容される賦形剤は、アルカリ・バッファー、又は腸溶カプセ
ル又は微粒剤を含むこともできる。本発明のワクチンは、膣経路により投与され
ることもできる。この場合、医薬として許容される賦形剤は、乳化剤、ポリマー
、例えば、カルボポール(CARBOPOL(商標))、膣クリーム及び坐剤の
他の知られた安定剤を含むこともできる。本発明のワクチンは、直腸経路により
投与されることもできる。この場合、上記賦形剤は、直腸坐剤を形成することが
本分野において知られたワックス及びポリマーを含むこともできる。
部を形成する。例えば、QS21,QS7,Quil A、β−エスシン、又は
ディギトニンを含む群から成る少なくとも2つの組合せ物である。さらに、本発
明の組成物は、2以上の免疫刺激性オリゴヌクレオチドの組合せ物を含みうる。
G/サポニン組合せ物は、モノホスホリル・リピドA及びその非毒性誘導体3−
脱−O−アシル化モノホスホリル・リピドAを含む他のアジュバントとさらに併
合されることができる。あるいは、上記サポニン配合物は、キトサン又は他のポ
リカチオン・ポリマー、ポリ乳酸及びポリラクチド−I−ポリグリコリド粒子、
ポリ−N−アセチル・グルコサミン−ベースのポリマー・マトリックス、多糖又
は化学的に修飾された多糖から成る粒子、リポソーム及び脂質ベースの粒子、グ
リセロール・モノエステルから作られた粒子、などから作られるワクチン媒体と
併合されることができる。上記サポニンは、粒子状構造、例えば、リポソーム又
はISCOMsを形成するために、コレステロールの存在下で配合されることも
できる。さらに、上記サポニンは、ポリオキシエチレン・エーテル又はエステル
と一緒になって、非粒子状溶液又は懸濁液、又は粒子状構築、例えば、小ラメラ
(paucilamelar)リポソーム又はISCOMにおいて、配合される
ことができる。上記サポニンは、賦形剤、例えば、カルボポール(商標)と配合
されて、粘度を増加されることもでき、又は粉末賦形剤、例えば、ラクトースと
ともに、乾燥粉末形態で配合されることができる。
naにより製造された周知のアジュバントである。それは、GB 2122204
B中に教示された方法により調製されうる。3−脱−O−アシル化モノホスホリ
ル・リピドAの好ましい形態は、直径0.2μm未満の小さな粒子サイズをもつ
エマルジョンの形態にある(EP 0 689 454 B1)。特に好ましい
アジュバントは、3D−MPL及びQS21の組合せ物(EP 0 671 9
48 B1)、3D−MPL及びQS21を含む油/水エマルジョン(WO95
/17210,WO98/56414)、又は他の担体と配合された3D−MP
L(EP 0 689 454 B1)である。
き出すことのできる抗原又は抗原組成物を含む。そのような抗原又は抗原組成物
は:HIV抗原(tat,nef,gp120またはgp160など)、ヒトヘ
ルペスウイルス抗原(gDまたはその誘導体あるいはHSV1またはHSV2由
来のICP27などの即時初期タンパク)、サイトメガロウイルス抗原(特にヒ
トgBまたはその誘導体)、ロタウイルス抗原(生減弱ウイルスを含む)、エプ
スタイン−バーウイルス抗原(gp350又はその誘導体など)、水疱疹ウイル
ス抗原(gpI,IIおよびIE63など)から、またはB型肝炎ウイルス(例
えばB型肝炎表面抗原又はその誘導体)、A型肝炎ウイルス抗原、C型肝炎ウイ
ルスおよびE型肝炎ウイルスなどの肝炎ウイルスから、あるいは、他のウイルス
性病原体、例えばパラミクソウイルス:呼吸器合胞体ウイルス(プロテインFお
よびG又はそれらの誘導体など)、パラインフルエンザウイルス、麻疹ウイルス
、おたふくかぜウイルス、ヒト乳頭腫ウイルス(例えばHPV6,11,16,
18)、フラビウイルス属(例えば、黄熱病ウイルス、デング熱ウイルス、ダニ
媒介脳炎ウイルス、日本脳炎ウイルス)またはインフルエンザウイルス抗原から
、(全生又は失活ウイルス、スプリット・インフルエンザ・ウイルスであって卵
又はMDCK細胞内で増殖したもの、又は全fluウイロソーム(viroso
me)(R. Gluck, Vaccine, 1992, 10, 915-920により記載されたもの)又はそ
の精製された又は組換えタンパク質、例えばHA,NP,NA、又はMタンパク
質、又はその組合せ物)、またはN.gonorrheaおよびN.menin
gitidisを含むNaisseria spp.(例えば、夾膜多糖及びそ
れらのコンジュゲート、トランスフェリン−結合プロテイン、ラクトフェリン結
合プロテイン、PilC、付着因子用);S.pneumoniae(ストレプ
トリジンまたはコリン結合プロテイン)、S.pyogenes(例えば、プロ
テインM又はその断片、C5Aプロテアーゼ、リポテイコ酸)、S.agala
ctiae,S.mutansを含むStreptococcus spp.;
H.ducreyi;Branhamella catarrhalisとして
も知られている(例えば、高分子量および低分子量付着因子およびインベーシン
)M.catarrhalisを含むMoraxella spp.;B.pe
rtussis(例えばpertactin,pertussistoxin又
はその誘導体filamenteous hemagglutinin,ade
nylate cyclase,fimbriae),B.parapertu
ssisおよびB.bronchisepticaを含むBordetella
spp.;M.tuberculosis(例えばESAT6、抗原85A,
BまたはC)、M.bovis,M.leprae,M.avium,M.pa
ratuberculosis,M.smegmatisを含むMycobac
terium spp.;L.pneumophilaを含むLegionel
la spp.;enterotoxic E.coli(例えばコロニー形成
因子、熱不安定毒素またはその誘導体、熱安定毒素またはその誘導体)、ent
erohemorragic E.coli,enteropathogeni
c E.coli(例えば志賀毒素様毒素またはその誘導体)を含むEsche
richia spp.;V.cholera(例えばコレラ毒素またはその誘
導体)を含むVibrio spp.;S.sonnei,S.dysente
riae,S.flexneriiを含むShigella spp.;Y.e
nterocolitica(例えばYopプロテイン)、Y.pestis,
Y.pseudotuberculosisを含むYersinia spp.
;C.jejuni(例えば毒素、付着因子およびインベーシン)およびC.c
oliを含むCampylobacter spp.;S.typhi,S.p
aratyphi,S.choleraesuis,S.enteritidi
sを含むSalmonella spp.;L.monocytogenesを
含むListeria spp.;H.pylori(例えばウレアーゼ、カタ
ラーゼ、空胞毒素)を含むHelicobacter spp.;P.aeru
ginosaを含むPseudomonas spp.;S.aureus,S
.epidermidisを含むStaphylococcus spp.;E
.faecalis,E.faeciumを含むEnterococcus s
pp.;C.tetani(例えば破傷風毒素およびその誘導体)、C.bot
ulinum(例えば、ボツリヌス毒素およびその誘導体)、C.diffic
ile(例えばクロストリジウム毒素AまたはBおよびその誘導体)を含むCl
ostridium spp.;B.anthracis(例えばボツリヌス毒
素およびその誘導体)を含むBacillus spp.;C.diphthe
riae(例えばジフテリア毒素およびその誘導体)を含むCorynebac
terium spp.;B.burgdorferi(例えばOspA,Os
pC,DbpA,DbpB),B.garinii(例えばOspA,OspC
,DbpA,DbpB),B.afzelii(例えば、OspA,OspC,
DbpA,DbpB),B.andersonii(例えばOspA,OspC
,DbpA,DbpB),B.hermssiを含むBorrelia spp
.;E.equiおよびHuman Granulocytic Ehrlic
hiosisの病原体を含むEhrlichia spp.;R.ricket
tsiiを含むRichettsia spp.;C.trachomatis
(例えばMOMP、ヘパリン結合プロテイン)、C.pneumoniae(例
えばMOMP、ヘパリン結合プロテイン)、C.psittaciを含むChl
amydia spp.;L.interrogansを含むLeptospi
ra spp.;T.pallidum(例えば希少な外膜プロテイン)、T.
denticola,T.hyodysenteriaeを含むTrepone
ma spp.から誘導され;又はP.falciparumを含むPlasm
odium spp.;T.gondii(例えばSAG2,SAG3,Tg3
4)を含むToxoplasma spp.;E.histolyticaを含
むEntamoeba spp.;B.microtiを含むBabesia
spp.;T.cruziを含むTrypanosoma spp.;G.la
mbliaを含むGiardia spp.;L.majorを含むLeshm
ania spp.;P.cariniiを含むPneumocystis s
pp.;T.vaginalisを含むTrichomonas spp.;S
.mansoniを含むSchisostoma spp.;などの寄生生物か
ら誘導され;又はC.albicansを含むCandida spp.;C.
neoformansを含むCryptococcus spp.などの酵母か
ら誘導される。
ましい特異的抗原は、例えば、TbRa12,TbH9,TbRa35,Tb3
8−1,Erd14,DPV,MTI,MSL,mTTC2、及びhTCC1で
ある(WO99/51748)。M.tuberculosisのためのタンパ
ク質は、少なくとも2つの、好ましくは3つの、M.tuberculosis
のポリペプチドがより大きなタンパク質に融合されているような融合タンパク質
及びその変異体をも含む。好ましい融合物は、Ra12−TbH9−Ra35,
Erd14−DPV−MTI,DPV−MTI−MSL,Erd14−DPV−
MTI−MSL−mTCC2,Erd14−DPV−MTI−MSL,DPV−
MTI−MSL−mTCC2,TbH9−DPV−MTIを含む(WO99/5
1748)。
HP)(WO99/17741)、ORF3(EP 366412)、及び推定
膜タンパク質(Pmps)を含む。ワクチン配合物の他のクラミジア抗原は、W
O99/28475中に記載された群から選ばれることができる。
ae)を含むストレプトコッカス種由来の抗原(例えば、夾膜多糖及びそのコン
ジュゲート、PsaA,PsaA、ストレプトリジン、コリン結合性タンパク質
)、及びタンパク質抗原ニューモリジン(Pneumolysin)(Biochem B
iophys Acta, 1989, 62, 1007; Rubins et al., Microbial Pathogenesis, 25,
337-342)、及びその突然変異体解毒誘導体(WO90/06951;WO99
/03884)由来の抗原を含む。他の好ましいバクテリア・ワクチンは、H.
インフルエンザエB型(例えば、PRP及びそのコンジュゲート)、非分類H.
インフルエンザエ(H.influenzae)を含むヘモフィラス(Haem
ophilus)種、例えば、OMP26、高分子量アドヘシン(adhesi
ns)、P5,P6、プロテインD、及びリポプロテインD及びフィンブリン(
fimbrin)及びフィンブリン由来ペプチド(US 5,843,464)
又は多コピー変異体又はその融合タンパク質由来の抗原を含む。
ヨーロッパ特許出願EP−A−414374;EP−A−0304578、及び
EP 198−474中に記載されたようなPreS1,PreS2S抗原を含
む。1の好ましい局面においては、本発明のワクチン配合物は、特にCHO細胞
内で発現されるとき、HIV−1抗原、gp120を含む。さらなる態様におい
ては、本発明のワクチン配合物は、先に定義したようなgD2tを含む。
ンは、生殖器いぼの原因であると考えられているヒト乳頭腫ウイルス(HPV)
由来の抗原(HPV6又はHPV11その他)、子宮頸癌の原因であるHPVウ
イルス由来の抗原(HPV16,HPV18その他)を含む。
ましい形態は、L1粒子又はキャプソマー(capsomers)、並びにHP
V6及びHPV11タンパク質E6,E7,L1、及びL2から選ばれる1以上
の抗原を含む融合タンパク質を含む。
ようなL2E7、及びGB 9717953.5(PCT/EP98/0528
5)中に開示されたプロテインD(1/3)−E7である。
PV16又は18抗原を含むことができる。例えば、L1又はL2抗原モノマー
、又はウイルス様粒子(VLP)として一緒に提示されるL1又はL2抗原、又
はVLP又はキャプソマー構造中単独で提示されるL1単独タンパク質。このよ
うな抗原、ウイルス様粒子及びキャプソマーは、それ自体知られている。例えば
、WO94/00152,WO94/20137,WO94/05792、及び
WO93/02184を参照のこと。
は好ましくはE5として含まれることができ;この特に好ましい態様は、L1E
7融合タンパク質を含むVLPを含む(WO96/11272)。
融合物を作るため、プロテインD担体と融合された初期タンパク質E6又はE7
、又はその組合せ物;あるいは、E6又はE7とL2との組合せ物を含む(WO
96/26277)。
ましくはプロテインD−E6/E7融合物中に提示されることができる。このよ
うなワクチンは、場合により、HPV18からE6タンパク質とE7タンパク質
のいずれか又は両者を、好ましくは、プロテインD−E6又はプロテインD−E
7融合タンパク質又はプロテインD E6/E7融合タンパク質の形態で含むこ
とができる。
3からの抗原をさらに含むことができる。
。例えば、プラスモディア・ファルシパラム(Plasmodia falci
parum)からの好ましい抗原は、RTS,S、及びTRAPを含む。RTS
は、B型肝炎表面抗原のプレS2部分の4つのアミノ酸を介して、B型肝炎ウイ
ルスの表面(S)抗原に連結されたP.falciparumのサーカムスポロ
ゾイト(circumsporozoite(CS))タンパク質のC末端部分
の実質的に全てを含むハイブリッド・タンパク質である。その全体構造は、英国
特許出願第9124390.7に基づく優先権を主張するWO93/10152
の下で公開された、国際特許出願第PCT/EP92/02591号中に開示さ
れている。酵母内で発現されるとき、RTSは、リポタンパク質粒子として製造
され、そしてHBVからのS抗原と同時に発現されるとき、それは、RTS,S
として知られる混合粒子を製造する。TRAP抗原は、WO90/01496の
下で公開された、国際特許出願第PCT/GB89/00895号中に記載され
ている。本発明の好ましい態様は、その抗原性調製物が、上記RTS,SとTR
AP抗原の組合せ物を含むところのマラリア・ワクチンである。マルチステージ
・マラリア・ワクチンの成分となるべき候補であろう他のプラスモディウム抗原
は、P.falciparum MSP1,AMA1,MSP3,EBA,GL
URP,RAP1,RAP2、セクエストリン(Sequestrin)、Pf
EMP1,Pf332,LSA1,LSA3,STARP,SALSA,PfE
XP1,Pfs25,Pfs28,PFS27/25,Pfs16,Pfs48
/45,Pfs230、及びプラスモディウム種におけるそれらのアナログであ
る。
ることもできる。例えば、上記アジュバントは、腫瘍拒絶抗原、例えば、前立腺
、乳房、結腸直腸、肺、膵臓、腎臓又はメラノーマ癌腫とともに利用される。例
示的な抗原は、MAGE1及びMAGE3又は他のMAGE抗原(メラノーマの
治療のためのもの)、PRAME,BAGE、又はGAGEを含む(Robbins an
d Kawakami, 1996, Current Opinions in Immunology 8, pps 628-636; Van den
Eynde et al., International Journal of Clinical & Laboratory Research(
寄稿1993);Correale et al. (1997), Journal of the National Cancer Instit
ute 89, p293)。実際、これらの抗原は、広い範囲の腫瘍タイプ、例えば、メラ
ノーマ、肺癌、肉腫、及び膀胱癌において発現されている。他の腫瘍特異的抗原
が、本発明のアジュバントと共に使用されるために好適であり、そして非限定的
に、腫瘍特異的ガングリオシド(gangliosides)、前立腺特異的抗
原(PSA)又はHer−2/neu,KSA(GA733),PAP、マンマ
グロビン(mammaglobin)、MUC−1、癌胎児性抗原(CEA)を
含む。従って、本発明の1の局面においては、本発明に係るアジュバント組成物
及び腫瘍拒絶抗原を含むワクチンが提供される。
り;このようなワクチンは、驚ろくべきことに、前立腺、乳、結腸直腸、肺、膵
臓、腎臓、卵巣又はメラノーマ癌腫の治療において有用である。従って、配合は
、腫瘍関連抗原、並びに腫瘍支持メカニズム(例えば、血管形成、腫瘍浸潤)に
関連する抗原を含むことができる。さらに、癌の治療におけるワクチンのための
特に関連する抗原は、前立腺特異的膜抗原(PSMA)、前立腺幹細胞抗原(P
SCA)、チロシナーゼ、スルビビン(survivin)、NY−ESO1、
プロスターゼ(prostase)、PS108(WO98/50567),R
AGE,LAGE,HAGE、を含むこともできる。さらに、上記抗原は、多く
の癌の治療において、又は免疫弱化(immunocastration)にお
いて有用である、全長ゴナドトロフィン(Gonadotrophin)ホルモ
ン放出ホルモン(GnRH,WO95/20600)、短い長さ10アミノ酸の
ペプチドの如き自己ペプチド・ホルモンであることができる。
に使用されるであろう。例えば、抗原は、核酸、病原体由来抗原又は抗原性調製
物、組換えにより製造されたタンパク質又はペプチド、及びキメラ融合タンパク
質を含む。特に、上記抗原はOspAである。上記OspAは、(Lipo−O
spA)といわれる宿主細胞(E.coli)による脂質化形態における完全成
熟タンパク質又は脂質化されていない誘導体であることができる。このような非
脂質化誘導体は、インフルエンザ・ウイルスの非構造タンパク質の最初の81の
N末端アミノ酸、及び完全OspAタンパク質、を含む非脂質化NS1−Osp
A融合タンパク質を含み、そして他のMDP−OspAは、3つの追加のN−末
端アミノ酸を担持するOspAの非脂質化形態である。
ようなワクチンは、アレルゲン特異的(例えば、DerP1)及びアレルゲン非
特異的抗原(例えば、ヒトIgE由来のペプチドであって非限定的にスタンワー
ス・デカペプチド(stanworth decapeptide)を含むもの
(EP 0 447 231 B1))を含むであろう。
は治療のために使用されることもできる。このような慢性障害は、アテローム性
動脈硬化症及びアルツハイマー病の如き疾患である。
関連する抗原は、特に、アミロイド前駆タンパク質のN末端39〜43アミノ酸
断片(Aβ)及びより小さな断片である。この抗原は、国際特許出願第WO99
/27944−(Athena Neurosciences)中に開示されて
いる。
有意な、悪い副作用を伴わずに免疫保護応答を誘導する量として選択される。こ
のような量は、どの特異的免疫原が使用されるか、及びどのようにそれが提示さ
れるかに依存して変動するであろう。一般に、各投与量は、1〜1000μgの
タンパク質、好ましくは1〜500μg、好ましくは1〜100μg、最も好ま
しくは1〜50μgを含むであろうと予想される。特別なワクチンの最適量は、
ワクチン接種された対象における適当な免疫応答の観察を含む標準的な試験によ
り確かめられることができる。最初のワクチン接種の後、被験体は、適当に間隔
をあけて、1又は数回のブースター免疫感作を受容することができる。このよう
なワクチン配合物は、プライミング又はブースティング・ワクチン接種処方にお
いて哺乳動物の粘膜表面に適用されることができ;又はあるいは、全身的に、例
えば、経皮、皮下又は筋中経路を介して、投与されることができる。
チドの量は、一般に少ないが、そのワクチンの配合に依存して、1〜1000μ
g/投与、好ましくは1〜500μg/投与、そしてより好ましくは1〜100
μg/投与の間の範囲にあることができる。
与、好ましくは1〜500μg/投与、より好ましくは1〜250μg/投与、
そして最も好ましくは1〜100μg/投与の間の範囲内にあることができる。
それ故、CpG:サポニンの比(w/w)は、1:1000〜1000:1の範
囲内、そして典型的には、1:100〜100:1の範囲内、そして好ましくは
、1:10〜1:1又は1:1〜10:1の、そして最も好ましくは1:1,4
:1又は10:1の範囲内にあるであろう。
って、ウイルス、バクテリア、寄生生物感染、アレルギー、癌その他の非慢性疾
患の予防及び治療のためのワクチンの製造におけるサポニン及びCpG分子の組
合せ物の使用が提供される。従って、本発明は、感染性疾患又は癌、又はアレル
ギー、又は自己免疫疾患にかかり易い又はかかった哺乳動物の治療方法を提供す
る。本発明のさらなる局面においては、薬物としての使用について本明細書中に
記載されるとき、サポニンとCpGを含む、ワクチン又はアジュバント組合せ物
が提供される。ワクチン調製物は、一般に、New Trends and Developments in V
accines, edited by Voller et al., University Park Press, Baltimore, Mary
land, U.S.A. 1978 中に記載されている。
めに使用されるであろうと予想される。例えば、抗原は、ヒト、バクテリア、又
はウイルスの核酸、病原体由来抗原又は抗原性調製物、宿主由来抗原であって、
IgE由来のペプチド・例えば、IgEのヒスタミン放出性デカペプチド(St
anwarthデカペプチドとして知られるもの)を含むもの、組換え製造タン
パク質又はペプチド、及びキメラ融合タンパク質を含む。
身性ワクチン組成物が提供される。従って、疾患にかかり易い又はかかった個体
の全身的経路を通じて本明細書中に実質的に記載するような組成物の投与による
上記個体の治療方法が提供される。また、個体が、感染性バクテリア及びウイル
ス性疾患、寄生生物疾患、前立腺、乳、結腸直腸、肺、膵臓、腎臓、卵巣又はメ
ラノーマ癌;非癌性慢性障害、アレルギー、アルツハイマー、アテローム性動脈
硬化症を含む群から選ばれる疾患にかかることを防ぐ方法であって、上記個体の
全身的経路を通じて本明細書中に実質的に記載するような組成物の投与を含む前
記方法も提供される。
物が提供される。従って、疾患にかかり易い又はかかった個体の粘膜表面に本明
細書中に実質的に記載したような組成物を投与することにより上記個体を治療す
る方法が提供される。
て、上記哺乳動物の粘膜表面に、抗原及び溶血性サポニンを含む組成物を投与す
ることを含む方法が提供される。さらに、ワクチン又はアジュバントの製造方法
であって、サポニンを取り込み、そしてCpG分子を取り込み、そしてそれらを
抗原と混合することを含む前記方法も提供される。
、リン酸緩衝液化生理食塩水、等張性バッファー溶液を含む。
。
のQS21とCpGの使用 本実施例において、我々は、溶解性サポニン、例えば、QS21と免疫刺激剤
、例えば、CpGが、シナルジスティックなやり方で、マウスの鼻腔内ブーステ
ィング・ワクチン接種に対する全身的免疫学的応答を高めることができたかどう
かを調べた。8週齢の雌Balb/cマウス(群当り5動物)を、アルム(al
um)(50μg)上に配合されたリポ−OspA(1μg)で筋中免疫化した
。3ヶ月後、このマウスを、A:PBS;B:20μg CpG1001(TC
C ATG AGC TTC CTG ACG TT,Krieg 1826)
;C:5μg QS21(Cambridge Biotech, USAから得たもの);D:20μ
g CpG1001+5μg QS21のいずれかの中に5μgリポ−OspA
を含む10μlの溶液(鼻孔当り5μl、ピペットにより滴としてデリバリーさ
れる)を(麻酔下で)鼻腔内で;又はE;アルム(50μg)上に吸着された1
μgのリポ−OspAの筋肉内注射により、ブーストした。
ml OspA 50μl/ウェル(プレートのB〜H列内)で、又はPBS中5
μg/ml精製ヤギ抗−マウスIg(Boerhinger)50μl(A列)で
、一夜コートする。上記プレートの空いた場所を、飽和バッファー:1%BSA
、0.1%ポリオキシエチレン・ソルビタン・モノラウレート(TWEEN20
)、及び4%正常ウシ血清(NBS)を含むPBSを用いて、ブロックする(1
時間、37℃)。次に、飽和バッファー(ウェル当り50μl)中で希釈され、
そして標準曲線として添加されたIgGアイソタイプ混合物の逐次的2倍希釈物
(200ng/mlから出発し、そしてA列内に入れられたSigmaからのマウス
・モノクローナル抗体IgG1,IgG2a、及びIgG2bの混合物)、及び
(1/100希釈から出発し、そしてB〜H列内に入れられた)血清サンプルを
、37℃で1時間30分の間インキュベートする。次に、上記プレートを、洗浄
バッファー(PBS、0.1%ポリオキシエチレン・ソルビタン・モノラウレー
ト(TWEEN20))で(3回)洗浄する。次に、飽和バッファー中で1/5
000希釈されたビオチニル化ヤギ抗−マウスIgG(Amersham)を、
37℃で、1時間30分の間インキュベートする(50μl/ウェル)。3回の
洗浄、その後のストレプトアビジン−ホースラディシュ・ペルオキシダーゼ・コ
ンジュゲート(Amersham)の添加の後、プレートを5回洗浄し、そして
顕色バッファー(50mM pH4.5クエン酸バッファー中OPDA 0.4mg/
ml(Sigma)及びH2 O2 0.03%)50μl/ウェルとともに、室温
で20分間インキュベートする。顕色を、50μl/ウェルH2 SO4 2Nの
添加により停止する。光学密度を、Biorad 3550イムノリーダーを用
いて492nmと630nmで読む。抗体力価を、SoftMaxProソフトウェ
アを用いて4変数計算法により計算する。
試験した。LA2は、バクテリアの表面にあるコンホメーショナルなOspAエ
ピトープを認識し、そしてインビトロにおいてB.burgdorferiを殺
すことができ、そして実験室で培養されたスピロヘータによる感染に対してマウ
スを保護することができることが示されているネズミのモノクローナル抗体であ
る(Schaible UE et al. 1990. Proc Natl Acad Sci USA 87 : 3768-3772)。さ
らに、LA−2 mabは、殺バクテリア抗体と相関することが示されており、
そしてヒト血清についての研究は、(ELISAにより計測されるとき)合計抗
−OspA IgG力価とLA2力価との間の良い相関をも示している。Max
isorp Nuncイムノプレートを、PBS水で希釈した0.5μg/mlリ
ポOspA 50μl/ウェルで4℃において一夜コートする。空いた場所を、
飽和バッファー(100μl/ウェルの飽和バッファー:PBS/BSA 1%
/Tween20 0.1%/NBS 4%)で、37℃において1時間ブロッ
クした。4μg/mlから開始するLA2モノクローナルAb(mAb)の逐次的
2倍希釈物を、標準曲線を作るために、飽和バッファー中で希釈した(ウェル当
り50μl)。(1/10希釈から開始する)ワクチン受容者からの血清サンプ
ルの希釈物も添加し、そして上記プレートを37℃で2時間インキュベートした
。上記プレートを、PBS/TWEEN20(0.1%)で3回のインキュベー
ションの後に洗浄した。飽和バッファー中で希釈したLA2 mAb−ペルオキ
シダーゼ・コンジュゲート(1/10,000)を、各ウェルに添加し(50μ
l/ウェル)、そして37℃で1時間インキュベートした。5回の洗浄後、プレ
ートを、50μl/ウェルの顕色バッファー(50mM pH4.5クエン酸バッフ
ァー中OPDA 0.4mg/ml及びH2 O2 0.03%)で、(暗所で)室温
において20分間インキュベートする。上記反応及び色の形成を、H2 SO4
2Nで停止した。光学密度を、Biorad 3550イムノリーダーを用いて
、492nmと630nmで読む。LA2−様Ab力価を、SoftMaxProソ
フトウェアを用いて4変数計算方法により計算する。LA2−様抗体力価を、上
記標準曲線との比較により測定した。
ングを有意に改善する。さらに、両アジュバントが併合されるとき、特に、LA
2抗体に関して、上記応答に対するシナルジスティックな効果が明らかに証明さ
れる。QS21とCpGの存在下で顕出される体液性応答は、非経口的ブースタ
ーにより誘導されたものよりも有意に高い。これらの結果を総合すると、上記結
果は、溶解性サポニンと免疫刺激剤を併合する鼻腔内配合物の能力をはっきりと
示している。
ングを強化するためのQS21とCpGのシナルジスティックな組合せ 本実施例において、我々は、溶血性サポニン、例えば、QS21(実施例を参
照のこと)、及び免疫刺激剤、例えば、CpGが、失活全インフルエンザ・ウイ
ルスで鼻腔内プライムされたマウスにおける全身的抗体の鼻腔内ブーストをシナ
ルジスティックなやり方で高めることができたかどうかを調べた。
然のプライミングを真似るために、β−プロピオラクトン失活3価全インフルエ
ンザ・ウイルス(A/北京/262/95;A/ヨハネスブルグ/33/94;
B/パナマ/45/90;5μgHA/株)で鼻腔内プライムした。28日後、
上記マウスを、A:PBS;B:50μg CpG(TCG TCG TTT
TGT CGT TTT GTC GTT,Krieg 2006);C:4.
5μg QS21(Cambridge Biotech, USAから得られたもの);D:50μg
CpG+4.5μg QS21のいずれかの中に1.5μgHA/株の、β−
プロピオラクトン失活3価全インフルエンザ・ウイルス(上記プライミング免疫
化におけるものと同一のもの)を含む20μlの溶液(鼻孔当り10μl、ピペ
ットにより滴としてデリバリーされたもの)で;又は、E:1.5μgHA/株
の3価スプリット・インフルエンザ・ウイルスの筋中注射(上記プライミング免
疫化におけるものと同一の株)により、(麻酔下で)鼻腔内ブーストした。Fl
u抗原は、SSD GmBH製造者(Dresden,Germany)により
供給された。
lu株特異的IgG力価及び血液凝集阻害(HAI)力価を示す。
/ウェルの、1μg/mlの全インフルエンザ・ウイルス抗原(プレートのB〜H
列内)で、又はPBS中5μg/ml精製ヤギ抗−マウスIg(Boerhing
er)50μl(A列)で、一夜コートする。上記プレートの空いた場所を、飽
和バッファー:1%BSA、0.1%ポリオキシエチレン・ソルビタン・モノラ
ウレート(TWEEN20)、及び4%正常ウシ血清(NBS)を含むPBSを
用いて、ブロックする(1時間、37℃)。次に、飽和バッファー(ウェル当り
50μl)中で希釈され、そして標準曲線として添加されたIgGアイソタイプ
混合物の逐次的2倍希釈物(200ng/mlから出発し、そしてA列内に入れられ
たSigmaからのマウス・モノクローナル抗体IgG1,IgG2a、及びI
gG2bの混合物)、及び(1/100希釈から出発し、そしてB〜H列内に入
れられた)血清サンプルを、37℃で1時間30分の間インキュベートする。次
に、上記プレートを、洗浄バッファー(PBS、0.1%ポリオキシエチレン・
ソルビタン・モノラウレート(TWEEN20))で(3回)洗浄する。次に、
飽和バッファー中で1/5000希釈されたビオチニル化ヤギ抗−マウスIgG
(Amersham)を、37℃で、1時間30分の間インキュベートする(5
0μl/ウェル)。3回の洗浄、その後のストレプトアビジン−ホースラディシ
ュ・ペルオキシダーゼ・コンジュゲート(Amersham)の添加の後、プレ
ートを5回洗浄し、そして顕色バッファー(50mM pH4.5クエン酸バッファ
ー中OPDA 0.4mg/ml(Sigma)及びH2 O2 0.03%)50μ
l/ウェルとともに、室温で20分間インキュベートする。顕色を、50μl/
ウェルH2 SO4 2Nの添加により停止する。光学密度を、Biorad 3
550イムノリーダーを用いて492nmと630nmで読む。抗体力価を、Sof
tMaxProソフトウェアを用いて4変数計算法により計算する。β−プロピ
オラクトン(BPL)で失活させた、上記コーティングのために使用された全イ
ンフルエンザ・ウイルス(株A/北京/262/95)は、SSD GmBH製
造者(Dresden,Germany)により供給される。
Mバッファー(pH9)及び125μl Dade Behring−購入カオリ
ン(kaolin)でまず処理する。遠心分離(30分間、3000RPM又は
860g)の後、(上記血清の1/10希釈物に対応する)100μl上清を取
り、そして0.5%ニワトリ赤血球とともに4℃で1時間インキュベートする。
上清を、3200RPMで10分間の遠心分離の後に集める(970g)。両操
作を、上記血清中に含まれる天然の血液凝集性因子を除去するために行う。次に
、25μlの処理された血清を、96ウェルGreinerプレート内の25μ
l PBS中で希釈する(1/20から出発する逐次的2倍希釈物)。BPL失
活全ウイルスを、撹乱下RTにおいて30分間、4血清凝集ユニットの濃度にお
いて(すなわち、赤血球の凝集を引き起こす最後のものよりも4倍低い希釈にお
いて)添加する(25μl/ウェル)。次にニワトリの赤血球をRTで1時間添
加する(25μl/ウェル)。最後に、プレートを、読む前に4℃で一夜保つ。
HAI力価は、上記ウイルス誘導血液凝集を阻害する最後の血清希釈に対応する
。
ティングを改善しない。しかしながら、両アジュバントが併合されるとき、上記
応答に対するシナルジスティックな効果が明らかに証明される。QS21とCp
Gの存在下で顕出されるHAI応答は、非経口ブースターにより誘導されるもの
よりもさらに類似する。これらの結果は、溶血性サポニン及び免疫刺激剤を併合
する鼻腔内配合物の能力を確認する。それらは、また、いくつかのCpG配列が
この文脈において効率的であることができるということをも示す(本実施例にお
けるKrieg 2006、及び実施例3と5におけるKrieg 1826)
。
るためのβ−エスシンとCpGのシナルジスティックな併合 我々は本実施例において、QS21とCpGの間に観察されるものよりも類似
するシナジーが、他の溶血性サポニン(実施例参照)、例えば、β−エスシンと
ともに観察されることができる可能性を評価する。非溶血性サポニン、グリチル
リジン酸(glycyrrhizic acid)もテストする。
配合されたリポ−OspA(1μg)で筋肉内にプライムした。3ヶ月後、上記
マウスを、A:PBS;B:50μg CpG1001(TCC ATG AG
C TTC CTG ACG TT,Krieg 1826);C:5μg β
−エスシン(Sigmaから購入);D:50μg CpG1001+5μg
β−エスシン;E:5μgグリチルリジン酸(Sigmaから購入);F:50
μg CpG1001+5μgグリチルリジン酸中のいずれかに5μgリポ−O
spAを含む10μlの溶液(鼻孔当り5μl、ピペットにより滴としてデリバ
リーされたもの)で、又はG:アルム(50μg)上に吸着された1μgリポ−
OspAの筋肉内注射により、(麻酔下で)鼻腔内ブーストした。図5は、上記
鼻腔内ブースティングから14日後のOspA特異的−LA2力価を示す。
めるためにシナルジスティックに作用する。この併合は、非経口ブースターより
も高められたAb応答を顕出する。他方において、このようなシナジーは、グリ
チルリジン酸とCpGの併合によっては得られない。
で免疫応答を強化するCpG及び異なる溶血性サポニンの能力が示される。
m RTS,S及びHIV−1 gp120を用いた免疫原性試験 1.実験概要 2つのマウス免疫原性試験を、CpGオリゴヌクレオチド(CpG)及びQS
21の潜在的な付加的又はシナルジスティックな効果を評価するために行った。
マウスの群を、CpGとQS21を単独で又は併合して配合されたRTS,Sと
gp120で免疫化した。これらのアジュバント併合物を、担体Al(OH)3
又は油/水(o/w)エマルジョンの存在下でもテストした。
−特異的抗体の存在について、及び抗体アイソタイプの分布について分析した。
細胞仲介免疫応答を評価するために脾臓細胞を使用した。これらの細胞を、細胞
毒性Tリンパ球(CTL)及びリンパ球増殖性(リンパ球増殖)細胞の存在につ
いてテストした。
とgp120(10μg)を、100μgのAL(OH)3 上に吸着させた。必
要なとき、MPL(5μg)を添加し、そして10倍濃縮PBS pH7.4とH 2 Oのミックスとして、バッファー添加の30分前にインキュベートした。但し
、それに関してそのバッファーがPO4 ,NaCl 10/150 pH6.8で
あるところのDQを含まない群を除く。30分後、必要な場合、1/5のQS2
1/コレステロールの重量比においてリポソームと混合されたQS21(5μg
)(DQという)を、上記配合物に添加した。30分後、上記オリゴとの配合の
ために、100μgのCpGを、保存料として50μg/mlのチオメルサールの
添加の30分前に添加した。
ある。50μg/mlのチオメルサールを保存料として添加する。
H2 OとPBS pH6.8で希釈する。5分後、上記配合物を、CpG1856
(100μg)上に吸着させる。
H2 OとPBS pH7.4で希釈する。30分後、RTS,Sとgp120を、
DQ(5μg)上に吸着させる。吸着から30分後、上記配合物をCpG185
6(100μg)上に吸着させる。
H2 OとPBS pH6.8で希釈する。5分後に、上記配合物を、o/wエマル
ジョン上に吸着させる。吸着から5分後に、上記配合物を、CpG(100μg
)の添加前にQS21(5μg)上に吸着させる。
間の間隔をあけて2回、2×50μlのワクチンを受容した。2週間後、抗体応
答を評価するために血清を得、そして脾臓細胞を収獲して、細胞−仲介免疫応答
を測定した。
−ウェル丸底マイクロタイター・プレート内で4連で植菌した。細胞を、RTS
,S又はgp120抗原の異なる濃度の存在下で、抗生物質、グルタミン、及び
1%(v/v)正常マウス血清を補ったRPMI−1640中で72又は96時
間培養した。対照細胞を、抗原を伴わずに培養した。次に、上記細胞を、1μC
i/ウェルの〔 3H〕−チミジンで一夜パルスし、収獲し、そして取り込まれた
放射能を、ベーターカウンター内で測定した。結果を、1分当りの平均カウント
数(cpm)として表す。
プ(Schirmbeck et al., 1995)に対応する合成ペプチドpCMI003(IPQ
SLDSWWTSL)、又はgp120 CTLエピトープ(Casement et al.,
1995)を提示するペプチドpCMI007(GIHIGPGRAFYAARK)
の存在下で、6−ウェル・プレート内で7日間培養した。上記培養期間の終わり
に、対照細胞とS−トランスフェクトP815細胞を用いて標準的な〔51Cr〕
−放出アッセイにおいてHBsAg−特異的細胞溶解活性について2連で、エフ
ェクター細胞を評価した。Gp120−特異的細胞毒性を、未処理で残ったか又
はペプチドpCMI007で1時間パルスされたP815標的細胞を用いて、測
定した。最小及び最大放出を、それぞれ、エフェクター細胞を伴わない標的細胞
を用いて、そして3%(v/v)Triton X−100の添加により、測定
した。結果を、%〔51Cr〕−放出((実験培養物のcpm−自然放出のcp
m)/(最大放出のcpm−自然放出のcpm))として表す。
プレートを用いて標準的な酵素結合イムノソルベント・アッセイ(ELISA)
において行った。血清を1:400から開始してPBS/BSA中で希釈した。
Igに特異的なビオチニル化第2抗体又はアイソタイプIgG1,IgG2a、
及びIgG2b、その後のホースラディシュ・ペルオキシダーゼ−ストレプトア
ビジン・コンジュゲートを、結合抗体の検出のために使用した。ELISA力価
を、SoftmaxProによる照会から計算し、そしてELISAユニット(
EU/ml)で表した。Gp120−特異的抗体力価を、gp120タンパク質でコ
ートしたプレートを用いて標準的なELISAにおいて測定した。血清を、1:
100から開始してPBS/Tween20/BSA中で希釈した。Igについ
て特異的なビオチニル化第2抗体又はアイソタイプIgG1,IgG2a、及び
IgG2b、その後のホースラディシュ・ペルオキシダーゼ−ストレプトアビジ
ン・コンジュゲートを、結合した抗体の検出のために使用した。力価を、標準的
なマウスに関して計算し、そしてμg/mlとして表した。
った。これに反し、両CpGとDQS21を含む群1と3は、CpG又はDQ2
1単独を含む群よりも良好なgp120−特異的リンパ球増殖応答を示した(図
6)。
アジュバント成分の中の1だけにより免疫化させた群2及び4と、CpGとDQ
21を受容している群1及び3の間に、CTL導入における目立った差異は存在
しなかったが、Al(OH)3 の存在は、群1におけるCpGとDQS21の組
合せについて観察されたCTL活性を低下させた(図7)。しかしながら、Cp
GとDQS21がDQS21単独よりも良好であり、そして上記組合せが、Cp
G単独よりも、Al(OH)3 の存在下でより多くのCTLを誘導したという傾
向が存在した(図7)。
調べた。力価は、約3倍の増加を示した群3を除く全ての群において類似であっ
た。このことは、Al(OH)3 の存在下、DQS21とCpGの組合せが、C
pG単独よりも免疫原性であることを示している(図8)。アイソタイプ分布は
、Al(OH)3 −含有群3と4について類似していたが、Al(OH)3 の存
在下では、CpGとDQS21の組合せは、DQS単独よりも強いTH1−様アイ
ソタイプ・パターンを誘導した(図8)。
していた。このデータは、(単独又はo/wエマルジョンとともにある)DQS
21の添加が、両抗原に対するリンパ球増殖応答を高めるということを示してい
る(図9)。
用して評価した。両ケースにおいて、CTLは、CpG単独での群1の免疫化の
後に検出されることができた(図10)。しかしながら、DQS21の添加は、
両抗原についてCTLにおけるかなりの増加をもたらした(図10)。o/wエ
マルジョンの存在は、DQS21正の効果を中和するか(gp120)又はイン
ビトロ・アッセイのバックグラウンドを増加させた(HBsAg)。
21の添加により高められた(図11A)。さらなる増加が、o/wエマルジョ
ンが上記配合物中に含まれるときに、観察された(図11A)。CpGへのDQ
S21の添加は、より顕著なTH1バイアスの方向に、gp120アイソタイプ特
性をシフトさせた(図11B)が、HBsAgアイソタイプ特性に対するインパ
クトは、本実験においてはより目立っていなかった。
免疫化は、強い抗原特異的免疫応答をもたらす。アジュバント成分CpGとDQ
S21の組合せは、その単一成分に比較して、 −リンパ球増殖応答を高め、 −CTL活性を高め、 −抗体力価及びTH1アイソタイプ・パターンを強化する。
療的能力 1.実験デザイン 4群の、10匹のマウスC57b1/6は、脇腹に0日目に皮下に、10e6
(200μl)TCI細胞(E7発現腫瘍細胞)を受容した。
μgの配合されたPD1/3E7 HPV16が足部に注射された。腫瘍増殖を
個々に週2回計測した。
た。
であった。必要な場合、PD1/3E7(5μg)を、等張性のためにH2 Oと
PBS pH7.4で希釈した。5分後、必要な場合、1/5のQS21/コレス
テロール重量比でリポソームと混合されたQS21(0.5μg)(DQという
)を、上記配合物に添加した。30分後、上記オリゴとの配合のために、保存料
としての1μg/mlのチオメルサールの添加の30分前に、10μgのCpG(
ODN2006)を添加した。
6 TCI細胞の腫瘍接種を受容した動物の100%が、増殖性の腫瘍を進行性
に顕出した。
パク質でワクチン接種された動物が、35日目までに死んだ。
成長に対してほとんど効果をもっていなかった。反対に、2つのワクチン接種、
CpGアジュバント中の5μg ProtD 1/3 E7 HPV16による
IFP(14日目と21日目)は、上記の樹立された腫瘍の反転を誘導し、そし
てマウスを死から保護した:上記マウスの70〜80%が35日目においてさえ
生存していた。
僅かに上廻る有益な効果を示した。
I)力価。
抗原特異的活性は、全4実験群について異なる抗原濃度についてSIとして表さ
れる。
クター細胞活性を、P815細胞(白丸)又はS−トランスフェクトされたP8
15細胞(黒丸)の51Cr放出を調べることにより評価した。
EU/mlとして表す)及びアイソタイプ・プロフィールを、ELISAテストを用
いて評価した。プールされた血清からの値を表中に示す。そしてアイソタイプ分
布を図に示す。
ンパ球増殖活性。抗原特異的活性を、全4実験群について異なる抗原濃度として
表す。
ンパ球増殖活性。抗原特異的活性を、全4実験群について異なる抗原濃度として
表す。
TL活性。エフェクター細胞活性を、対照P815細胞(白記号)又はHBsA
g又はgp120 CTLエピトープを提示するP815細胞(黒記号)の51C
r放出を調べることにより評価した。
TL活性。エフェクター細胞活性を、対照P815細胞(白記号)又はHBsA
g又はgp120 CTLエピトープを提示するP815細胞(黒記号)の51C
r放出を調べることにより評価した。
答。特異的抗体力価(μg/mlで表す)(図11A)及びアイソタイプ・プロフ
ィールをELISAテストを用いて評価した。プールされた血清からの値を表中
に示す。そしてアイソタイプ分布を図中に示す。
Claims (29)
- 【請求項1】 サポニンと免疫刺激性オリゴヌクレオチドを含むアジュバン
ト組成物。 - 【請求項2】 担体をさらに含む、請求項1に記載のアジュバント組成物。
- 【請求項3】 前記サポニンが、クイルA(Quil A)、又はQS21
,QS7,QS17の如き精製されたサポニン;β−エスシン(β−escin
)、又はディギトニン(digitonin)から成る群から選ばれる、請求項
1又は2に記載のアジュバント組成物。 - 【請求項4】 前記免疫刺激性オリゴヌクレオチドが、プリン、プリン、C
,G、ピリミジン、ピリミジンの配列を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記
載のアジュバント組成物。 - 【請求項5】 前記免疫刺激性オリゴヌクレオチドが、TCC ATG A
CG TTC CTG ACG TT(配列番号1);TCT CCC AGC
GTG CGC CAT(配列番号2);ACC GAT GAC GTC
GCC GGT GAC GGC ACC ACG(配列番号3);TCG T
CG TTT TGT CGT TTT GTC GTT(配列番号4);TC
C ATG ACG TTC CTG ATG CT(配列番号5)から成る群
から選ばれる、請求項1〜4に記載のアジュバント組成物。 - 【請求項6】 前記免疫刺激性オリゴヌクレオチドが、少なくとも3つのヌ
クレオチドにより分離された少なくとも2つのメチル化されていないCGリピー
トを含む、請求項1〜4のいずれか1項に記載のアジュバント組成物。 - 【請求項7】 前記免疫刺激性オリゴヌクレオチドが、少なくとも2つのメ
チル化されていないCGリピートであって6ヌクレオチドにより分離されている
ものを含む、請求項6に記載のアジュバント組成物。 - 【請求項8】 前記担体が、鉱物塩、エマルジョン、ポリマー、リポソーム
、ISCOMsから成る群から選ばれる粒子状担体である、請求項2〜7のいず
れか1項に記載のアジュバント組成物。 - 【請求項9】 抗原をさらに含む、請求項1〜8のいずれか1項に記載のア
ジュバント組成物を含むワクチン組成物。 - 【請求項10】 前記抗原が、ヒト免疫不全ウイルス、水疱瘡ウイルス、単
純ヘルペスウイルス1型、単純ヘルペスウイルス2型、ヒト・サイトメガロウイ
ルス、デング病(Dengue)ウイルス、A型、B型、C型又はE型肝炎ウイ
ルス、呼吸器合胞体ウイルス、ヒト乳頭腫ウイルス、インフルエンザ・ウイルス
、Hib、髄膜炎ウイルス、サルモネラ、ナイセリア、ボレリア、クラミジア、
ボルデテラ、ストレプトコッカス、マイコプラズマ、マイコバクテリア、ヘモフ
ィラス、プラスモディウム又はトキソプラズマ、スタンワース(stanwor
th)デカペプチドから成る群から選ばれる生物由来;又は腫瘍関連抗原(TA
A)、MAGE,BAGE,GAGE,MUC−1,Her2neu,CEA,
PSA,KSA、又はPRAME;又は自己ペプチド・ホルモン、GnRHであ
る、請求項9に記載のワクチン組成物。 - 【請求項11】 前記抗原が、(a)腫瘍関連抗原PSMA,PSCA、チ
ロシナーゼ、スルビビン(survivin)、NY−ESO1、プロスターゼ
(prostase)、PS108,RAGE,LAGE,HAGE;(b)ミ
エロイド前駆タンパク質のN末端39〜43アミノ酸断片(Aβ);又は(c)
アテローム性動脈硬化症に関連する抗原、から成る群に由来する、請求項9に記
載のワクチン組成物。 - 【請求項12】 前記ワクチンが全身的に投与される、請求項9〜11のい
ずれか1項に記載のワクチン組成物。 - 【請求項13】 前記ワクチンが粘膜に投与される、請求項9〜11のいず
れか1項に記載のワクチン組成物。 - 【請求項14】 前記アジュバント組成物のサポニンが溶血性である、請求
項13に記載のワクチン組成物。 - 【請求項15】 請求項9〜11のいずれかに記載のワクチンで事前に満た
されたデリバリー・デバイスであって、そのデバイスが、全身的に上記ワクチン
を投与するためにデザインされている、前記デバイス。 - 【請求項16】 安全かつ有効量の、請求項9〜11に記載のワクチン組成
物の全身的投与を含む、個体における免疫応答の誘導方法。 - 【請求項17】 有効量の、請求項9〜14のいずれか1項に記載のワクチ
ンの個体への投与による、病気にかかり易い又はかかった個体の治療方法。 - 【請求項18】 前記ワクチンの投与が、全身経路を通じてのものである、
請求項17に記載の治療方法。 - 【請求項19】 請求項9〜11のいずれか1項に記載のワクチンの投与を
含む、前立腺、乳、結直腸、肺、膵臓、腎臓、卵巣又はメラノーマ癌;非癌性慢
性障害、アレルギー、アルツハイマー、アテローム性動脈硬化症から成る群から
選ばれる病気にかかった個体の治療方法。 - 【請求項20】 請求項9〜11のいずれか1項に記載のワクチンの投与を
含む、前立腺、乳、結直腸、肺、膵臓、腎臓、卵巣又はメラノーマ癌;非癌性障
害、アレルギー、アルツハイマー、アテローム性動脈硬化症から成る群から選ば
れる病気にかかることから個体を予防する方法。 - 【請求項21】 前記ワクチンが全身経路を介して投与される、請求項19
又は20に記載の治療方法。 - 【請求項22】 医薬として使用される、請求項9又は11に記載のワクチ
ン。 - 【請求項23】 ウイルス、バクテリア、寄生生物感染、アレルギー、癌又
は他の慢性失調の予防又は治療のためのワクチンの製造におけるサポニンとCp
G分子の併合物の使用。 - 【請求項24】 ウイルス、バクテリア、寄生生物感染、アレルギー、癌又
は慢性失調の予防又は治療のためのワクチンの製造における、サポニン、免疫刺
激性オリゴヌクレオチド、及び担体の併合物の使用。 - 【請求項25】 哺乳動物における全身的抗原特異的免疫応答を誘導する方
法であって、上記哺乳動物の粘膜表面に、抗原及び溶血性サポニン及びCpG分
子を含む組成物を投与することを含む前記方法。 - 【請求項26】 サポニンを免疫刺激性オリゴヌクレオチドと混合すること
を含む、アジュバント組成物の製造方法。 - 【請求項27】 サポニン、免疫刺激性オリゴヌクレオチド、及び担体を混
合することを含む、アジュバント組成物の製造方法。 - 【請求項28】 以下の、(a)サポニン、(b)免疫刺激性オリゴヌクレ
オチド、及び(c)抗原を混合することを含む、ワクチンの製造方法。 - 【請求項29】 以下の、(a)サポニン、(b)免疫刺激性オリゴヌクレ
オチド、(c)担体、及び(d)抗原を混合することを含む、ワクチンの製造方
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