CH664968A5 - Gonadoliberin-derivate und verfahren zu ihrer herstellung. - Google Patents

Gonadoliberin-derivate und verfahren zu ihrer herstellung. Download PDF

Info

Publication number
CH664968A5
CH664968A5 CH6073/84A CH607384A CH664968A5 CH 664968 A5 CH664968 A5 CH 664968A5 CH 6073/84 A CH6073/84 A CH 6073/84A CH 607384 A CH607384 A CH 607384A CH 664968 A5 CH664968 A5 CH 664968A5
Authority
CH
Switzerland
Prior art keywords
trp
group
pro
ser
glp
Prior art date
Application number
CH6073/84A
Other languages
English (en)
Inventor
Tamas Gulyas
Aniko Dr Horvath
Gyoergy Dr Keri
Karoly Dr Nikolics
Balazs Dr Szoeke
Istvan Dr Teplan
Original Assignee
Koezponti Valto Hitelbank
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Koezponti Valto Hitelbank filed Critical Koezponti Valto Hitelbank
Publication of CH664968A5 publication Critical patent/CH664968A5/de

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K7/00Peptides having 5 to 20 amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K7/04Linear peptides containing only normal peptide links
    • C07K7/23Luteinising hormone-releasing hormone [LHRH]; Related peptides
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P5/00Drugs for disorders of the endocrine system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S930/00Peptide or protein sequence
    • Y10S930/01Peptide or protein sequence
    • Y10S930/13Luteinizing hormone-releasing hormone; related peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Compounds Of Unknown Constitution (AREA)

Description

BESCHREIBUNG Die Erfindung betrifft neue Gonadoliberin-Derivate, deren Salze und Metallkomplexe sowie ein Verfahren zu ihrer Herstellung. Die neuen Nonapeptid-Ci-4-allcylamide beziehungsweise Delcapeptidamide entsprechen der allgemeinen Formel I
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-X2-X3-Pro-X4 (I),'
worin
Xi für Glycylgruppe oder eine natürliche oder synthetische
D-Aminosäuregruppe,
X2 für L-Phenylalanyl- oder L-Tryptophylgruppe oder eine L-Aminosäuregruppe mit 1-4 Kohlenstoffatomen in der
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
3
664 968
Seitenkette,
X3 für eine als Seitenkette eine Alkylgruppe mit 1-4 Kohlenstoffatomen oder eine Carbamylalkylgruppe mit 2-4 Kohlenstoffatomen enthaltende L-Aminosäuregruppe und X4 für Glycylamidgruppe oder eine Alkylamidgruppe mit 1-4
Kohlenstoffatomen steht mit der Einschränkung, dass - falls Xi eine andere Bedeutung hat als Glycylgruppe und X2 für Tryptophylgruppe steht - X3 eine andere Bedeutung als Leucylgruppe hat.
Die in der Formel verwendeten Symbole entsprechen der in der Peptidchemie üblichen Nomenklatur (s. z.B. J. Biol. Chem. 241, 527 [1966]).
Das Gonadoliberin (es wird in der Fachliteratur auch als gonadotropin releasing hormone Gn-RH, luteinisierendes und Follikel stimulierendes Hormon, releasing hormone, LH/FSH-RH bezeichnet) und seine bekannten Derivate haben die allgemeine Eigenschaft, zur Freisetzung der luteinisierenden und Follikel stimulierenden Hormone (LH und FSH) fähig zu sein.
Zu Beginn der achtziger Jahre wurde bekannt, dass sich die Struktur des Gonadoliberins mancher Fische von der Struktur des Gonadoliberins der Säugetiere unterscheidet (J.A. King und R.P. Miliar, J. Biol. Chem. 257,10722-28 [1982]; South-African Journal of Science 78,124 [1982]; N. Sherwood et al., Proc. Nati. Acad. Sei. 80,2794-2798 [1983]). Dieser Unterschied wird von der an 7. beziehungsweise 8. Stelle befindlichen Aminosäure verursacht.
Aus der Literatur ist ferner bekannt, dass die statt des Glycins in 6-Stellung gewisse D-Aminosäuren enthaltenden Gonadoliberin-Derivate eine stärkere Wirkung haben als das Gonadoliberin selbst (J. Sandow et al.: Control of Ovulation, Butterworth, London 1978, S. 49-70).
Bekannt ist auch, dass durch Austausch der Glycinamid-gruppe in 10-Stellung gegen Amidgruppen mit aliphatischen Ketten die biologische Wirksamkeit des Gonadoliberins weiter erhöht werden kann (M. Fujino et al., J. Med. Chem. 16, 1144-1147 [1973]).
Ziel der Erfindung ist die Herstellung neuer Gonadoliberin-Derivate, die in der Vermehrung von Fischen wirksam eingesetzt werden können. Ein weiteres Ziel der Erfindung besteht darin, von diesen Verbindungen Derivate herzustellen, die vorteilhaftere biologische Eigenschaften zeigen als die Grundverbindungen.
Die Erfindung beruht auf der Erkenntnis, dass durch Austausch der in 7- und 8-Stellung befindlichen Aminosäuren des Gonadoliberins beziehungsweise durch gewisse Kombinationen dieses Austauschs Gonadoliberin-Derivate hergestellt werden können, die zur Vermehrung von Fischen geeignet sind. Die Erfindung beruht ferner auf der Erkenntnis, dass die biologische Wirksamkeit der durch Austausch der in 7-und 8-Stellung befindlichen Aminosäuren des Gonadoliberins entstandenen Gonadoliberin-Derivate durch Austausch der Glycingruppe in 6-Stellung gegen gewisse D-Aminosäu-ren beziehungsweise der Glycinamidgruppe in 10-Stellung gegen Alkylamidgruppen noch erhöht werden kann.
Zum Gegenstand der Erfindung gehört ferner auch ein Verfahren zur Herstellung der Nonapeptid-Ci-4-alkylamide beziehungsweise Dekapeptidamide der allgemeinen Formel I
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-X2-X3-Pro-X4 (I),
worin die Bedeutung von Xi, X2, X3 und X4 die gleiche wie oben ist, sowie ihrer Salze und Metallkomplexe.
Die Verbindungen der allgemeinen Formel I werden erfindungsgemäss hergestellt, indem man a) unter Anwendung der Methode der Festphasensynthese aus den entsprechend geschützten Aminosäuren schrittweise in der gewünschten Reihenfolge durch Koppeln mit Carbo-
diimid oder über einen aktiven Ester am festen Träger aufbaut und das Endprodukt durch saures oder basisches Abspalten von dem Träger ablöst und die Schutzgruppen vor, während oder nach dem Abspalten vom Träger ebenfalls abspaltet, oder b) aus geschützten Aminosäuren durch entsprechende Kombinationen von schrittweiser Kondensation und Fragmentkondensation aufbaut.
Als fester Träger wird zweckmässig Benzhydrylaminharz oder BOC-Prolinharz verwendet.
Das Schutzgruppen enthaltende Endprodukt wird zweckmässig durch Abspalten mit Fluorwasserstoff und/oder durch Äthylammonolyse vom Harz abgespalten.
Von den unter b) genannten Kombinationen sind besonders die folgenden bevorzugt: das Pentapeptidazid der Formel (II)
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-N3 (II)
wird mit einem Tetra- oder Pentapeptid der allgemeinen Formel (III)
Xi-X2-X3-Pro-X4 (III)
kondensiert; oder ein Hexapeptidazid der allgemeinen Formel (IV)
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-N3 (IV)
wird mit einem Tri- oder Tetrapeptid der allgemeinen Formel
(V)
X2-X3-Pro-X4 (V)
kondensiert; oder ein Heptapeptidazid der allgemeinen Formel (VI)
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-X2-N3 (VI)
wird mit einem Di- oder Tripeptid der allgemeinen Formel (VII)
X3-Pro-X4 (VII)
kondensiert.
In den Formeln (III) bis (VII) ist die Bedeutung von Xi, X2, X3 und X4 die gleiche wie oben angegeben.
Das gebildete Nona- beziehungsweise Dekapeptidamid kann gewünschtenfalls durch Umsetzen mit einer physiologisch verträglichen Säure zu einem Säureadditionssalz umgesetzt werden. Aus dem Säureadditionssalz kann gewünschtenfalls durch Behandeln mit einer Base die Verbindung freigesetzt und gewünschtenfalls das Nona- beziehungsweise Dekapeptidamid zu einem Metallkomplex umgesetzt werden.
Die Verbindungen der allgemeinen Formel (I) können gewünschtenfalls zu Arzneimittelpräparaten formuliert werden. Zu diesem Zweck werden die Verbindungen der allgemeinen Formel (I) oder ihre physiologisch verträglichen Säureadditionssalze oder ihre Metallkomplexe zusammen mit den in der Arzneimittelherstellung üblichen Träger- und/oder Hilfsstoffen zu Tabletten, Dragées, Kapseln, Suppositorien, Injektionslösungen, Nasensprays usw. formuliert.
Die Gonadoliberin-Derivate der allgemeinen Formel (I) werden den Fischen durch intramuskuläre oder subkutane Injektion appliziert und sind in einem Dosisbereich von 0,1 (ig bis 5 mg wirksam.
Der Hauptvorteil der Erfindung besteht darin, dass die neuen Gonadoliberin-Derivate in 7- und 8-Stellung für Fische
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
664 968
charakteristische Aminosäurekombinationen enthalten und deshalb zur Vermehrung dieser Tiergattung erfolgreich eingesetzt werden können.
Die Erfindung wird an Hand der folgenden Beispiele näher erläutert. Gemäss den Beispielen 1-5 wurden die Verbindungen mit den allgemein üblichen Methoden der Peptid-synthese in der festen Phase (Merrifield, R.B., J. Am. Chem. Soc. 85, 2149-2151 [1963]) hergestellt. Abhängend von der Struktur der herzustellenden Verbindung ging man im Falle eines Peptidalkylamides von chlormethylierten Polystyrol-Divinylbenzol-Harzen, im Falle von Peptidsäureamiden von Benzhydrylaminharzen aus. Die einzelnen Aminosäuren wurden mit Hilfe von Diisopropylcarbodiimid (DIC) beziehungsweise Dicyclohexylcarbodiimid (DCC) in Form ihrer mit t-Butoxycarbonyl (BOC) geschützten Derivate beziehungsweise mit der Methode des aktiven Esters schrittweise an das Harz gekoppelt.
Der Verlauf der Kupplungsreaktion wurde mit dem Nin-hydrin-Test (Kaiser, E., Colescott, R.L., Bossinger, C.D., Cook, P.I., Anal. Biochem. 34,595-598 [1970]) verfolgt. Bei Anzeige freier Aminogruppen wurde die Acylierung wiederholt. Die Zeitdauer der Kupplungsreaktionen beträgt abhängend von den Aminosäuren 1 bis 16 Stunden.
Das Abspalten der Schutzgruppen und das Abspalten des Peptids von dem Harz kann mit flüssigem, wasserfreiem Fluorwasserstoff in einem Schritt erfolgen (Sakakibara S., Shi-monishi Y., Kishida Y., Okada M., Sugikara H., Bull Soc. Japan 40, 2164-2167 [1967]). Bei der Verwendung von Nim-Dinitrophenyl wird die Entfernung der Schutzgruppe noch vor der mit HF vorgenommenen Abspaltung durchgeführt. Das geschützte Peptidharz wird in propylaminhaltigem Dimethylformamid verrührt und nach Entfernung des Lösungsmittels in der üblichen Weise mit HF behandelt. Ist die hergestellte Verbindung ein Peptidalkylamid, so wird das Peptid durch Alkylammonolyse von dem Harz abgetrennt und dann - abhängend von dem Charakter der Schutzgruppen - katalytisch hydriert und/oder sauer hydrolysiert.
Das rohe Produkt wird nach dem mit HF vorgenommenen Abtrennen durch Gelfiltration gereinigt. Dazu dient eine Säule aus Sephadex G25, eluiert wird mit essigsauren Lösungen.
Zur weiteren Reinigung werden HPLC-Säulen (Hoch-druckflüssigkeitschromatographie) und/oder Silikagelchro-matographie herangezogen. Die Reinheit der Peptide wird durch Aminosäureanalyse und mittels Dünnschichtchromatographie untersucht. Die Rf-Werte der Dünnschichtchromatographie wurden an Kieselgel (DC Alufolie, Merck) mit den folgenden Lösungsmittelgemischen ermittelt:
1. Äthylacetat/Pyridin/Essigsäure/Wasser 30:20:6:11
2. Äthylacetat/Pyridin/Essigsäure/Wasser 60:20:6:11
3. Äthylacetat/Pyridin/Essigsäure/Wasser 120:20:6:11
4. Äthylacetat/Pyridin/Essigsäure/Wasser 240:20:6:11
5. n-Butanol/Essigsäure/Wasser/Äthylacetat 1:1:1:1
6. n-Butanol/Essigsäure/Wasser 4:1:1
7. i-Propanol/lM Essigsäure 2:1
8. Äthylacetat/Pyridin/Essigsäure/Wasser 5:5:1:3
9. n-Butanol/Essigsäure/Ammoniak (conc.,
Ammoniak und H2O = 1:4)/Wasser 6:1:1:2
10. Methyläthylketon/Essigsäure/Wasser 125 ;15:20
Beispiel 1
D-Phe6, Gln8-Gonadoliberin (M: 1243)
a) Synthese
1,25 g (1 mMol) Benzhydrylaminhydrochlorid-Harz [0,8 mM/g, Pierce] werden 2 Stunden lang in Dichlormethan gequellt. Bei der Acylierung mit den Aminosäuren wird jeweils der folgende Zyklus wiederholt:
Schritt Reagens, Arbeitsgang Rührdauer,
min
1 CH2CI2, Waschen 3 x 1
2 33% Trifluoressigsäure im Gemisch mit 1 67% CH2CI2, Waschen 3 x
3 (dito) ' 25
4 CH2CI2, Waschen 3 x 1
5 CHCb, Waschen 2 x 1
6 Gemisch aus 10% Triäthylamin 2 und 90% CHCb, Waschen 2 x
7 CHCb, Waschen 2 x 1
8 Äthanol, Waschen 2 x 1
9 CH2CI2, Waschen 2 x 1
10 3 mMol BOC-Aminosäure, in 60 Dichlormethan gelöst*, und (Verschie-3 mMol DCC oder DIC, in CH2CI2 den) gelöst
11 CH2CI2, Waschen 2 x 1
12 Äthanol, Waschen 2 x 1
* Bei Kopplung von Gin wird mit der Methode des aktiven Esters über BOC-Gln-ONP gekoppelt; im Falle von Pyroglu-taminsäure wurde ohne Schutzgruppe gearbeitet.
Nach dem letzten Schritt beträgt das Gewicht des Glp-His(Tos)-Trp-Ser(OBzl)-Tyr(OBzl)-D-Phe-Leu-Gln-Pro-Gly-Peptidharzes 2,28 g.
AW: 1,05 g (66%) (Mgesch. Peptid: 1577)
b) Abspalten mit HF
Zu dem Harz werden 3 ml Anisol und 100 mg Dithiothreit gegeben, dann werden in dem Gemisch 30 ml HF kondensiert. Das Gemisch wird bei 0 °C eine Stunde lang gerührt. Anschliessend wird der Fluorwasserstoff im Stickstoffstrom entfernt, der Rückstand wird in absolutem Äther suspendiert und dann filtriert. Der feste Rückstand wird in 50%iger Essigsäure gewaschen. Das Filtrat wird bei 37 °C eingedampft. Der Rückstand wurde unmittelbar der Gelchromatographie zugeführt (s. folgenden Punkt).
c) Gelchromatographie
Die gemäss dem vorhergehenden Punkt erhaltene Substanz wurde an einer Säule aus Sephadex G25 (2,5 x 100 cm) mit 50%iger Essigsäure als Elutionsflüssigkeit gereinigt. Die Elution wurde mittels der Absorption von UV-Licht der Wellenlänge 280 nm sowie mittels Dünnschichtchromatographie verfolgt. Die Elutionsgeschwindigkeit beträgt 15 ml/h. Die Fraktionen zwischen 300 ml und 350 ml werden gesammelt und lyophilisiert. Gewicht: 690 mg (55%).
d) Präparative Hochdruckflüssigkeitschromatographie
Es wurde eine präparative HPLC-Säule der Masse
2,5 x 45 cm (Cis-Silikagel LRP-1,13-24 (im; Whatman) verwendet. Diese wurde mit einem Gemisch aus 25% Methanol und 75% 30%iger Essigsäure äquilibriert. Nach Einstellen des Gleichgewichtes werden 230 mg der gelchromatisch gereinigten Substanz, gelöst in dem gleichen Lösungsmittelgemisch, auf die Säule aufgebracht. Eluiert wurde mit einem Methanol/Essigsäure-Gradienten, dessen Zusammensetzung sich zwischen 25% Methanol/75% 30%ige Essigsäure und 40% Methanol/60% 30%ige Essigsäue linear ändert.
Die Elutionsgeschwindigkeit beträgt 2 ml/min, der Druck 3,5 • 105 Pa. Die Fraktionen werden mit UV-Licht der Wellenlänge 280 nm detektiert, ihr Gehalt wird dünnschichtchroma-
4
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
5
664 968
tographisch kontrolliert. Das Gewicht des reinen Endproduktes D-Phe6, Gln8-GnRH beträgt nach dem Lyophilisieren 133 mg. Das entspricht, auf die Gesamtmenge der Substanz bezogen, 399 mg (32%) an gereinigtem Endprodukt.
Rf = 0,76 Rf = 0,68 Rf = 0,33 Rf = 0,93 Rf = 0,83
Aminosäureanalyse :
Gly: 1,02 Pro: 0,95 Leu: 1,00 Phe: 1,02 Tyr: 1,01 Ser: 0,93 His: 0,99 Glu: 1,96 . Schmp.: 175-178 °C; [a]g= -68° (c = 0,l, 0,1 M AcOH)
Beispiel 2
Trp7, Gln8-Gonadoliberin (M: 1226)
a) Synthese
Ausgehend von 2,5 g (1 mM) Benzhydrylaminhydrochlo-ridharz [0,4 mÄqu./g] wird auf die im Beispiel 1 unter Punkt a) beschriebene Weise das Peptidharz Glp-His(DNP)-Trp-Ser(OBzl)-Tyr-Gly-Trp-Gln-Pro-Gly-Harz hergestellt. Das Gewicht des Peptidharzes beträgt 3,62 g
AW: 1,12 g (76%) (Mgesch. Peptid: 1468)
b) Entfernung der Schutzgruppen und Abspalten des Peptides vom Harz
Abspalten der Dinitrophenyl-Schutzgruppe (DNP)
Das Peptidharz wird in dem Gemisch aus 20 ml Dimethyl-formamid und 1 ml Propylamin bei Raumtemperatur eine Stunde lang gerührt. Anschliessend wird das Harz abfiltriert und mit Dichlormethan, dann mit Äthanol gewaschen.
Spaltung mit HF
Nach der Entfernung der Dinitrophenyl-Schutzgruppe werden auf die im Beispiel 1 unter Punkt b) beschriebene Weise das Peptid vom Harz beziehungsweise die Schutzgruppen vom Peptid abgespalten. Nach Abschluss der beiden Schritte verbleiben 0,8 g (65%) Substanz.
c) Gelchromatographie
Man arbeitet auf die im Beispiel 1 unter Punkt c) angegebene Weise. Das Gewicht der gesammelten und lyophilisierten Fraktionen beträgt 520 mg (42%).
d) Präparative Hochdruckflüssigkeitschromatographie
Man arbeitet auf die im Beispiel 1 unter Punkt d) angegebene Weise mit dem Unterschied, dass die Äquilibrierung mit einem Gemisch aus 18% Methanol und 82% 30%iger Essigsäure vorgenommen wird. Die gelchromatographisch gereinigte Substanz wird mit einem Methanol/Essigsäure-Gemisch, dessen Zusammensetzung sich zwischen 18% Methanol/82% 30%ige Essigsäure und 35% Methanol/65% 30%ige Essigsäure linear ändert, von der Säule eluiert. Die Fraktionierung sowie die sonstigen Bedingungen stimmen mit denen in Beispiel ld) überein. Das Gewicht des lyophilisierten Endproduktes beträgt 380 mg (31%).
Rf = 0,66 Rf = 0,57 Rf8 = 0,78
Aminosäureanalyse :
Glu: 1,93 Gly: 2,04 Pro: 1,00 Tyr: 0,98 Ser: 0,93 Trp: 1,86 His: 1,03
Beispiel 3
Trp7, Leu8, desGlyNH210-Gonadoliberin-äthylamid (M= 1198)
a) Synthese
Als erster Schritt der Synthese wird BOC-Pro in literaturbekannter Weise (Merrifîeld, R.B., J. Am. Chem. Soc. 86, 304 [1964]) an ein chlormethyliertes Polystyrolharz gekoppelt. 2 g des auf diese Weise erhaltenen BOC-Pro-Harzes [0,5 mÄqui./g] werden zwei Stunden lang in Dichlormethan gequellt, und dann werden auf die unter Punkt a) in Beispiel 1 beschriebene Weise schrittweise die entsprechenden geschützten Aminosäuren an das Harz gekoppelt. Neh dem letzten Zyklus erhält man 3,02 g des Peptidharzes Glp-His(DNP)-Trp-Ser(OBzl)-Tyr(OBzl)-Gly-Trp~Leu-Pro.
AW: 1,02 g (83%) (Mgesch. Peptid: 1486)
b) Entfernung der Schutzgruppen und Abspalten des Peptids vom Harz
Zuerst wird gemäss Punkt b) des Beispiels 2 die Dinitro-phenyl-Schutzgruppe von dem Histidin abgetrennt. Anschliessend wird das Peptid in Form des Äthylamids vom Harz abgespalten (Coy, D.H., et al., Biochemistry 13, 323-326 [1974]). Zu diesem Zweck werden auf das geschützte Peptidharz 15 ml Äthylamin aufkondensiert, und das Gemisch wird bei 0 ° C 3 Stunden lang gerührt. Der Überschuss des Amins wird mittels Stickstoff ausgetrieben. Dann wird mit Methanol, anschliessend mit Dimethylformamid gewaschen. Die DMF-Lösung wird eingedampft und das als Eindampfrückstand erhaltene Öl mit Äther verrieben. Der Niederschlag wird abfiltriert.
Die auf diese Weise erhaltene Festsubstanz wird gemäss Punkt b) des Beispiels 1 zwecks Entfernung der Schutzgruppen mit gasförmigem Fluorwasserstoff behandelt. Man erhält 710 mg (59%) Nonapeptidäthylamid.
c) Gelchromatographie
Man arbeitet auf die unter Punkt c) des Beispiels 1 beschriebene Weise mit einer Säule aus Sephadex G25 und verwendet als Elutionsmittel 30%ige Essigsäure. Das Gewicht der gesammelten und lyophilisierten Fraktionen beträgt 490 mg (41%).
Das rohe Peptid wird an einer Säule aus Kieselgel 60 (230-400 mesh, Merck) der Masse 2 x 100 cm weiter gereinigt. Eluiert wird mit einem Gemisch aus Äthylacetat, Pyridin, Essigsäure und Wasser im Verhältnis 30:20:6:11. Die Durchflussgeschwindigkeit beträgt 8 ml/h. Fraktionen zu je 4 ml werden aufgefangen, und die Elution wird dünnschichtchro-matographisch verfolgt.
Die dem Gonadoliberinäthylamid Trp7,Leu8,des GlyNHi0 entsprechenden Fraktionen werden auf Grund der Aminosäureanalyse bestimmt. Man erhält 320 mg (26%) lyophilisiertes Material.
Rf = 0,61 Rf = 0,42 Rf = 0,75
Aminosäureanalyse :
Glu: 0,96 Gly: 0,97 Pro: 0,95 Leu: 1,00 Ser: 0,89 Tyr: 1,02 Trp: 1,88 His: 1,03
Beispiel 4
Phe7,Gln8-Gonadoliberin (M = 1187)
a) Synthese
1,25 g (1 mMol) Benzhydrylaminhydrochlorid-Harz (0,8 mÄqu./g) lässt man zwei Stunden lang in Dichlormethan quellen. Daraus werden auf die im Beispiel la beschriebene Weise 2,9 g des Peptidharzes Glp-His(Tos)-Trp-Ser(OBzl)-Tyr(OBzl)-Gly-Phe-Gln-Pro-Gly-Harz hergestellt.
AW: 1,27 g (83%) (Mgesch. Pept!d: 1521)
b) Abspalten der Schutzgruppen
Das geschützte Peptid wird auf die im Beispiel lb) beschriebene Weise mit wasserfreiem HF behandelt. 980 mg (82%) ungeschütztes Peptid werden erhalten.
c) Gelfiltration
Das rohe Decapeptidamid wird auf die im Beispiel lc) beschriebene Weise an einer mit Sephadex G-25 gefüllten Säule mit 2 M Essigsäure gereinigt. Ausbeute: 576 mg (49%).
d) Präparative HPL-Chromatographie
Man arbeitet auf die im Beispiel ld) beschriebene Weise
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
664 968
6
mit dem Unterschied, dass das Gel LRP-1 mit einer 10% Methanol und 20% Essigsäure enthaltenden wässrigen Lösung äquilibriert wird. Eluiert wird mit einem linearen Gradienten, der in 20%iger Essigsäure von 10% aus ansteigend bis zu 25% Methanol enthält (2 x 150 ml). Dann wird die Elution mit einem zwischen 25% und 40% ansteigend Methanol enthaltenden linearen Gradienten (2 x 150 ml) fortgesetzt. Die das reine Peptid enthaltenden Fraktionen werden gesammelt und eingedampft.
Ausbeute: 448 mg (38%)
Rf = 0,12 Rf = 0,7 Rf = 0,24 Rj = 0,87 Aminosäureanalyse :
Ser: 0,87 Glu: 2,05 Pro: 1,03 Gly: 2,13 Tyr: 0,92 Phe: 1,00 His: 0,95 Trp: 0,81 Schmp. : 182 °C Beispiel 5 Phe7,Leu8-Gonadoliberin (M = 1172)
a) Synthese
0,62 g (0,5 mMol) Benzhydrylaminhydrochlorid-Harz (0,8 mÄqu./g) lässt man zwei Stunden lang in Dichlormethan quellen. Dann wird auf die im Beispiel la) beschriebene Weise das Peptidharz Glp-His(Tos)-Trp-Ser(QBzl)-Tyr(0 Bzl)-Gly-Phe-Leu-Pro-Gly-Harz hergestellt. Ausbeute: 1,33 g.
AW: 695 mg (92%) (Mgesch. Peptid: 1506)
b) Behandeln mit HF
Das geschützte Peptid wird auf die im Beispiel lb) beschriebene Weise mit wasserfreiem HF behandelt. Man erhält 510 mg (87%) rohes Decapeptid.
c) Gelfiltration
Das gemäss Schritt b) erhaltene rohe Decapeptidamid wird auf die im Beispiel lc) beschriebene Weise an einer Säule aus Sephadex G-25 mit 2 M Essigsäure gereinigt. Ausbeute: 363 mg (62%).
d) Chromatographie an Silikagel
Zur weiteren Reinigung des Peptids dient eine mit Kieselgel 60 gefüllte Säule der Masse 2 x 100 cm, die mit einem im Verhältnis 1:1:1:1 bereiteten Gemisch aus n-Butanol, Essigsäure, Wasser und Äthylacetat eluiert wird. Der Gehalt der Fraktionen wird UV-spektroskopisch sowie mittels Dünnschichtchromatographie kontrolliert. Man erhält 299 mg (51%) des reinen Decapeptidamids.
Rf = 0,55 Rf = 0,39 R^ = 0,62 R? = 0,73 Aminosäureanalyse :
Ser: 0,91 Glu: 0,97 Pro: 1,07 Gly: 2,12 Leu: 1,00 Tyr: 1,03 Phe: 0,94 His: 1,05
Beispiel 6
D-Phe6,Hln8,desGlyNril)-Gonadoliberin-äthylamid (M= 1198)
a) BOC-His(DNP)-Trp-OMe (M = 622,52)
21,12 g (50 mMol) BOC-His(DNP)-OH werden in 100 ml Dimethylformamid gelöst. Die Lösung wird auf 0 °C gekühlt und unter Rühren mit 10,32 g (50 mMol) Dicyclohexylcarbo-diimid und 7,66 g (50 mMol) N-Hydroxybenztriazol versetzt. Das Gemisch wird bei 0 °C 10 Minuten lang gerührt, dann wird das ausgeschiedene Dicyclohexylkarbamid abfiltriert.
12,74 g (50 mMol) H-Trp-OMe- HCl werden in 70 ml Dimethylformamid gelöst, und die Lösung wird auf 0 °C gekühlt. Man gibt 6,94 ml (50 mMol) Triäthylamin zu der Lösung und filtriert nach 5minütigem Rühren das ausgeschiedene Triäthylamin-hydrochlorid ab.
Die beiden Lösungen werden vereinigt und über Nacht bei 0 °C gerührt. Anderntags wird das ausgeschiedene DCU abfiltriert und das Filtrat zur Trockne eingedampft. Das zurückbleibende Öl wid in 500 ml Äthylacetat gelöst. Die Lösung wird zuerst mit 3 x 100 ml eiskalter 1 M KHSCh-Lösung, dann mit 5 x 100 ml gesättigter Natriumhydrogencar-bonatlösung und schliesslich mit 2 x 100 ml 10%iger NaCl-Lösung ausgeschüttelt. Die organische Phase wird über Magnesiumsulfat getrocknet und nach dem Filtrieren zur Trockne eingedampft. Der ölige Rückstand wird mit Petrol-äther verrieben, filtriert und dann getrocknet. Die erhaltene kristalline Substanz wurde in Äthylacetat gelöst und mit Petroläther ausgefällt.
Ausbeute: 27,70 g (89%)
Schmp.: 119-122 °C
[ci]d = + 14,1° (c= 1, in Dimthylformamid)
Rf = 0,62 Rf = 0,41
b) H-His(DNP)-Trp-OMe • 2HC1 (M = 522,49 [freie Base] 595,41 [-2HC1])
24,9 g (40 mMol) des Dipeptids BOC-His(DNP)-Trp-OMe werden in 100 ml Methanol gelöst. Zu der Lösung werden 100 ml 4n methanolische Salzsäure gegeben. Das Gemisch wird bei Raumtemperatur 30 Minuten lang stehengelassen. Das in dieser Zeit auskristallisierende Dipeptid-esterhydrochlorid wird abfiltriert, mit Äther gewaschen und dann getrocknet.
Ausbeute: 21,91 g (92%)
Schmp.: 198-202 °C
[a]o =0,49° (c= 1, in Dimethylformamid)
R? = 0,46 Rf = 0,18
c) Glp-His(DNP)-Trp-OMe (M = 633,60)
4,85 g (36,8 mMol) L-Pyroglutaminsäure, 7,58 g Dicyclo-hexylcarbodiimid und 5,63 g N-Hydroxybenztriazol werden in 100 ml Dimethylformamid gelöst. Das Gemisch wird bei 5-10 °C 10 Minuten lang gerührt und dann das ausgefallene DCU abfiltriert.
20,84 g (35 mMol) H-His(DNP)-Trp-OMe • 2HC1 werden in 100 ml Dimethylformamid gelöst und zu der Lösung 9,72 ml (70 mMol) Triäthylamin gegeben. Nach 5minütigem Rühren wird das ausgeschiedene Triäthylaminhydrochlorid abfiltriert. Die beiden Lösungen werden vereinigt und über Nacht bei Raumtemperatur gerührt. Anderntags wird das Gemisch mit 90 ml Aceton versetzt, die sich ausscheidende unlösliche Substanz wird abfiltriert. Das Filtrat wird eingedampft. Das zurückbleibende Öl wird mit Äthylacetat verrieben und dann getrocknet. Die trockene kristalline Substanz wird mit 3 x 25 ml Wasser gewaschen und erneut getrocknet. Die Substanz kann durch kochendes Lösen in Äthylacetat und Abkühlen der Lösung umkristallisiert werden.
Ausbeute: 18,42 g (83,1%)
Schmp.: 148-151 °C
[a]o = + 5,2° (c = 1, in Dimethylformamid)
Rf = 0,53 Rf = 0,38
d) Glp-His-Trp-OMe (M = 466,50)
15,84 g des geschützten Tripeptids Glp-His(DNP)-Trp-OMe werden in einem Gemisch aus 100 ml Dimethylformamid und 40 ml Wasser gelöst. Die Lösung wird mit 4 ml Mer-captoäthanol versetzt und dann mit Triäthylamin auf pH 8 gestellt. Das Gemisch wird bei Raumtemperatur 30 Minuten lang stehengelassen und dann im Vakuum zur Trockne eingedampft. Der ölige Rückstand wird mit Äther verrieben, filtriert und getrocknet. Die erhaltene Substanz wird in wenig Methanol gelöst und durch Zusatz von Äther ausgefällt. Die Kristalle werden abfiltriert und getrocknet.
Ausbeute: 10,92 g (93,6%)
Schmp.: 228-232 °C
[a]i> = + 4,04° (c = 0,42, in Dimethylformamid)
Rf = 0,30
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
7
664 968
e) Glp-His-Trp-NaHs (M = 466,51)
9,33 g (20 mMol) des Tripeptids Glp-His-Trp-OMe werden in 250 ml Methanol gelöst und zu der Lösung 20 ml 98%iges Hydrazinhydrat gegeben. Das Reaktionsgemisch wird 3 Stunden lang bei 40 °C, dann über Nacht bei Raumtemperatur gerührt. Anderntags wird die ausgeschiedene Substanz abfiltriert, mit kaltem Methanol gewaschen und dann getrocknet.
Ausbeute: 7,58 g (81,2%)
Schmp.: 166-169 °C
[a]o = -22,3° (c=0,5, in Dimethylformamid) Rf = 0,50 Rf = 0,14
f) Glp-His-Trp-Ser-Tyr-OMe (M = 716,8)
7,0 g (15 mMol) Glp-His-Trp-NzEh (Produkt des Schrittes e) werden in 60 ml Dimethylformamid gelöst. Die Lösung wird auf 0 °C gekühlt und unter Rühren mit 7,5 ml (45 mMol) 6n HCl versetzt. Dann tropft man langsam die gesättigte wässrige Lösung von 1,035 g (15 mMol) NaNCh zu dem Gemisch und rührt weitere 15 Minuten bei 0 °C. Dann versetzt man das Gemisch mit der Lösung von 4,78 g (15 mMol) H-Ser-Tyr-OMe • HCl in 15 ml Dimethylformamid und stellt den pH-Wert mit 6,25 ml (45 mMol) Triäthylamin auf neutral. Das Gemisch wird über Nacht bei 0-40 C gerührt, anderntags im Vakuum zur Trockne eingedampft und der ölige Rückstand mit Äther verrieben.
Das Gewicht des pulverförmigen Produktes beträgt 12,1 g (100%). Das Chromatogramm zeigt Flecken von zwei geringfügigen Verunreinigungen, jedoch kann das Produkt ohne zwischenzeitliche Reinigung zum Hydrazid umgesetzt werden, welches gut kristallisiert. Physikalische Daten der zur Kontrolle aus Methanol umkristallisierten Substanz:
Schmp.: 188-190 °C
[a]n = -3,48° (c= 1, Dimethylformamid)
Rf = 0,58 Rf = 0,26
g) Glp-ffis-Trp-Ser-Tyr-NîHa (M = 716,8)
12 g des rohen, pulverisierten Pentapeptidesters Glp-His-Trp-Ser-Typ-OMe werden in 200 ml Methanol gelöst und zu der Lösung 10 ml 98%iges Hydrazinhydrat gegeben. Das Gemisch wird bei 40 °C drei Stunden lang und dann über Nacht bei Raumtemperatur gerührt, die ausgefallenen Kristalle werden abfiltriert und im Exsikkator über konzentrierter Schwefelsäure getrocknet. Die getrocknete kristalline Substanz wird in 250 ml 0,5 n HCl gelöst, die Lösung mit konzentrierter Sodalösung auf pH 8 gestellt und bei 0 °C zwei Stunden lang stehengelassen. Die ausgefallenen Kristalle werden abfiltriert, mit eiskaltem Wasser gewaschen und dann getrocknet.
Ausbeute: 6,12 g (auf beide Schritte bezogen 56,9%) Schmp.: 205-206 °C
Md = - 21,51° (c=l, Dimethylformamid)
Rf = 0,39 Rf = 0,14
Hydrazinstickstoff: berechnet: 3,91%, gefunden: 3,79%, 3,76%
h) Z-Gln-Pro-NHEt (M = 405,4)
3,242 g Prolinäthylamid (hergestellt aus 22,8 mMol Z-Pro-NHEt durch Hydrieren) werden in 70 ml Tetrahydrofu-ran gelöst und zu der Lösung 5,60 g (20 mMol) Z-Gln-OH und 1,034 g N-Hydroxybenztriazol gegeben. Das Reaktionsgemisch wird auf dem Eisbad gekühlt und unter Rühren mit der Lösung von 5,34 g (25,9 mMol) Dicyclohexylcarbodiimid in 50 ml Tetrahydrofuran gegeben. Das Reaktionsgemisch wird auf dem Eisbad 5 Stunden lang, dann bei Raumtemperatur noch 20 Stunden lang gerührt, filtriert und das Filter mit Tetrahydrofuran nachgewaschen. Das Filtrat wird im Vakuum eingedampft und der Rückstand in Chloroform gelöst. Die Lösung wird mit 3 x 35 ml mit der fünffachen Menge Wassers verdünntem Ammoniak, dann mit 2 x 20 ml Wasser, anschliessend mit 3 x 35 ml Salzsäure und schliesslich erneut mit 2 x 20 ml Wasser gewaschen. Dann wird die organische Phase über wasserfreiem Natriumsulfat getrocknet und filtriert. Das Filter wird mit Chloroform nachgewaschen. Dann wird die Lösung zur Trockne eingedampft. Der ölige Rückstand wird in einem Gemisch aus 35 ml Tetrahydrofuran und 50 ml Äthylacetat gelöst und die Lösung filtriert. Nach Abdampfen des Lösungsmittels bleibt ein Öl zurück, das mit 100 ml Äther kristallisiert wird. Die feste Substanz wird auf dem Filter mit Äther gewaschen und dann im Vakuum getrocknet. Man erhält 7,68 g (95%) Produkt.
Rf = 0,45 Rf = 0,73
i) Z-Leu-Gln-Pro-NHEt (M = 518,57)
4,5 g (11 mMol) des geschützten Dipeptidamids Z-Gln-Pro-NHEt werden in 30 ml Eisessig gelöst. Zu der Lösung werden 55 ml 4n eisessigsaure Bromwasserstoffsäure gegeben. Das Reaktionsgemisch wird bei Raumtemperatur 1 Vi Stunden lang stehengelassen, dann mit 250 ml Äther versetzt und wieder eine Stunde stehengelassen. Die über dem Niederschlag stehende Flüssigkeit wird dekantiert, der Rückstand mit 100 ml Äther aufgeschlämmt, nach 15 Minuten abflltriert und mit reichlich Äther gewaschen. Die hygroskopische feste Substanz wird im Vakuum über Phosphorpent-oxyd und Natriumhydroxyd getrocknet. Ausbeute: 4,9 g (hygroskopisch).
3,8 g (11 mMol) des erhaltenen Dipeptidäthylamidhydro-bromids werden in 150 ml Chloroform suspendiert. Zu der Suspension werden 7,0 ml Triäthylamin gegeben. Dann wird das Reaktionsgemisch mit der Lösung von 6,4 g Z-Leu-pen-tachlorphenylester in 65 ml Chloroform versetzt und über Nacht gerührt. Anderntags wird das Reaktionsgemisch mit In Salzsäure, gesättigter Kochsalzlösung, 2n Ammoniak und schliesslich wieder mit gesättigter Kochsalzlösung extrahiert. Die organische Phase wird über wasserfreiem Natriumsulfat getrocknet und dann im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wird mit Äther verrieben, die Festsubstanz abfiltriert, mit Äther gewaschen und dann im Vakuum getrocknet. Man erhält 4,6 g (81%) Rohprodukt.
j) GH-Leu-Gln-Pro-NHEt • HBr (M = 465,5)
Von dem auf die unter Punkt i) beschriebene Weise hergestellten Tripeptid Z-Leu-Gln-Pro-NHEt wird die Schutzgruppe ohne zwischenzeitliche Reinigung entfernt. Zu diesem Zweck wird das Produkt in 10 ml eisessigsaurer Bromwasser-stofflösung gelöst. Die Lösung wird bei Raumtemperatur eine Stunde lang gerührt und dann das Produkt durch Zusatz von 100 ml wasserfreiem Äther ausgefällt. Die Substanz wird abfiltriert und im Exsikkator getrocknet. Das Produkt ist ein gelbes hygroskopisches Pulver.
Ausbeute: 3,54 g (76%)
R? = Ö,42 Rf = 0,13 Rf = 0,55 R| = 0,1
k) BOC-D-Phe-Leu-Gln-Pro-NHEt (M = 631,74) 2,33 g (5 mMol) des Tripeptidhydrochlorids H-Leu-Gln-Pro-NHEt-HBr werden in 5 ml Dimethylformamid gelöst. Die Lösung wird auf 0 °C gekühlt und zuerst mit 0,70 ml (0,5 mMol) Triäthylamin und dann mit der Lösung von 2,57 ml (5 mMol) BOC-D-Phe-pentachlorphenylester in 10 ml Dimethylformamid versetzt. Der pH-Wert der Lösung wird mit Trimethylamin auf einen Wert zwischen 7 und 8 gestellt. Das Gemisch wird bei Raumtemperatur 48 Stunden lang gerührt. Während dieser Zeit wird der pH-Wert mit Triäthylamin auf dem angegebenen Wert gehalten. Dann wird die Lösung im Vakuum eingedampft, der Rückstand wird in 100 ml Chloroform gelöst und die Lösung mit 10 x 10 ml
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
664 968
8
0,1 M Ammoniak gewaschen. Dann wird die organische Phase über Natriumsulfat getrocknet, abfiltriert und eingedampft. Der ölige Rückstand kann durch Behandeln mit Äther in ein Pulver überführt werden. Das getrocknete Rohprodukt wiegt 2,81 g (89%). Die Schutzgruppe wird ohne weitere Reinigung entfernt.
1) H-D-Phe-Leu-Gln-Pro-NHEt • TFA (M = 645,65)
1,26 g (2 mMol) des Tetrapeptids BOC-D-Phe-Leu-Gln-Pro-NHEt werden in 10 ml Trifluoressigsäure gelöst. Die Lösung wird bei Raumtemperatur 20 Minuten lang gerührt. Die Trifluoressigsäure wird dann im Vakuum schnell entfernt. Der Rückstand wird an einer Silikagelsäule mit einem im Verhältnis 4:1:1 bereiteten Gemisch aus n-Butanol, Essigsäure und Wasser chromatographiert. Die Produktfraktionen werden gesammelt und im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wird in wenig Wasser gelöst und dann lyophilisiert.
Ausbeute: 880 mg (68%)
Rf = 0,25 Rf = 0,35
Schmp.: 142 °C; [a]o = —66° (c = 0,l, Dimethylformamid).
m) Glp-His-Trp-Ser-Ty-D-Phe-Leu-Gln-Pro-NHEt (M= 1199)
286 g (0,4 mMol) des gemäss Schritt g hergestellten Penta-peptidhydrazids Glp-His-Trp-Ser-Tyr-N2H3 werden in 10 ml Dimethylformamid gelöst. Die Lösung wird auf —10 °C gekühlt und unter Rühren mit 0,27 ml 6n Salzsäure und dann mit der gesättigten wässrigen Lösung von 30,2 mg NaNCh versetzt. Nach 5 Minuten gibt man die mit einem Gemisch aus 1 ml Dimethylformamid und 0,27 ml Triäthylamin bereitete und auf — 10 °C gekühlte Lösung von 258 mg (0,4 mMol) H-D-Phe-Leu-Gln-Pro-NHEt-TFA zu dem Gemisch. Das Reaktionsgemisch wird eine Stunde lang bei - 5 ° C, dann eine weitere Stunde lang bei 0 ° C gerührt,
wobei der pH-Wert notwendigenfalls durch Zusatz von Triäthylamin auf einem neutralen Wert gehalten wird. Schliesslich lässt man die Temperatur auf Raumtemperatur ansteigen und dampft das Reaktiosngemisch im Vakuum ein.
Das nach dem Verdampfen erhaltene Öl wird in 5 ml 0,2n Essigsäure gelöst und an einer Säule aus Sephadex G25 (2 x 95 cm) mit 0,2n Essigsäure chromatographiert. Die entsprechenden Fraktionen werden gesammelt und lyophilisiert.
Ausbeute: 298 mg (62%)
R f = 0,74 Rf = 0,65 R? = 0,37 Rf = 0,80
Aminosäurenanalyse Ser: 0,89 Pro: 0,97 Leu: 1,00 Phe: 0,99 Glu: 1,98 His: 1,01 Tyr: 1,03 Trp: 0,91
Beispiel 7
Trp7Gln8,desGlyI0-Gonadoliberinäthylamid (M= 1220)
a) BOC-Gln-Pro-NHET (M = 370)
1,0 g (7 mMol) Prolinäthalamid wird in 15 ml Dimethylformamid gelöst. Der pH-Wert der Lösung wird mit Triäthylamin auf 8 eingestellt. Zu der Lösung wird die Lösung von 3,2 g (8,4 mMol) tert.-Butoxycarbonyl-glutaminyl-p-nitrophe-nylester in 15 ml Dimethylformamid gegeben. Das Reaktionsgemisch wird bei Raumtemperatur 48 Stunden lang gerührt. Während dieser Zeit wird der pH-Wert mit Triäthylamin bei 8 gehalten. Der nach dem Eindampfen des Reaktionsgemisches verbleibende ölige Rückstand wird in Wasser gelöst, die Lösung mit Äther gewaschen und die wässrige Phase im Vakuum eingedampft. Ausbeute: 1,93 g (74,5%)
Rf = 0,76.
b) H-Gln-Pro-NHEt-TFA(M = 270 [freie Base], M = 367 [TFA-Salz])
1,9 g (7,2 mMol) BOC-Gln-Pro-NHEt werden in 10 ml
Trifluoressigsäure gelöst. Das Gemisch wird bei Raumtemperatur 20 Minuten lang gerührt und dann im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wird mit Äther verrieben, abfiltriert und im Vakuum getrocknet. Ausbeute: 1,52 g (58%).
Rf = 0,45 Rf = 0,45 R? = 0,25 = 0,30
Die Substanz ist hygroskopisch.
[afe°= -34,8° (c= 1, Methanol).
c) BOC-Trp-Gln-Pro-NHEt (M = 557)
500 mg (1,85 mMol) H-Gln-Pro-NHEt werden in 10 ml Dimethylformamid gelöst. Der pH-Wert wird mit Triäthylamin auf 8 eingestellt. Zu dem Reaktionsgemisch gibt man 608 g (2 mMol) tert.-Butoxycarbonyl-tryptophan in 10 ml Dimethylformamid und 620 |il (4 mMol) N,N'-Diisopropyl-carbodiimid. Das Reaktionsgemisch wird bei Raumtemperatur 48 Stunden lang gerührt und dann im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wird in Äthylacetat gelöst und mit Äther ausgefällt. Das ausgefallene Produkt wird abfiltriert, mit Äther gewaschen und dann getrocknet.
Ausbeute: 740 mg (72%)
Rf = 0,75 R? = 0,38
d) H-Trp-Gln-Pro-NHEt-TFA (M = 456,5 [freie Base], M = 554 [TFA-Salz])
700 mg (1,25 mMol) BOC-Trp-Gln-Pro-NHEt werden in 15 ml eines im Verhältnis 1:1 bereiteten Gemisches aus Trifluoressigsäure und Dichlormethan gelöst. Die Lösung wird bei Raumtemperatur 20 Minuten lang gerührt und anschliessend im Vakuum eingedampft. Der Rückstand wird mit Äther verrieben, abfiltriert und getrocknet. Das Rohprodukt (500 mg) wird an einer Silikagelsäule mit einem im Verhältnis 47:20:6:11 bereiteten Gemisch aus Äthylacetat, Pyridin, Essigsäure und Wasser chromatographisch gereinigt. Die Produktfraktionen werden gesammelt und im Vakuum zur Trockne eingedampft. Der Rückstand wird mit Äther verrieben. Man erhält 360 mg (52%) eines weissen Pulvers.
Rf = 0,46 Rf = 0,18
Schmp.: 119-123 °C; [a&°= -4,8° (c = 0,l, 0,ln HCl)
e) BOC-Gly-Trp-Gln-Prop-NHEt (M = 613,7)
350 mg (0,76 mMol) H-Trp-Gln-Pro-NHEt werden in Dimethylformamid gelöst und mit 104 mg (0,8 mMol) BOC-Gly auf die im Schritt c) beschriebene Weise gekoppelt. Man erhält 375 mg (81%) einer kristallinen Substanz.
Rf = 0,88 Rf = 0,82 R^ = 0,61
0 H-Gly-Trp-Gln-Pro-NHEt • TFA (M = 609,6)
375 mg (0,6 mMol) BOC-Gly-Trp-Gln-Pro-NHEt werden auf die im Schritt d) beschriebene Weise von der Schutzgruppe befreit und gereinigt. Man erhält 285 mg (76,6%) eines weissen Pulvers.
Rf = 0,08 Rf = 0,16 Rf = 0,67 Rf = 0,28
g) Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Trp-Gln-Pro-NHEt (M= 1216,4)
286 g (0,4 mMol) des Pentapeptidhydrazids Glp-His-Trp-Ser-Tyr-N2H3 werden mit 243,8 mg (0,4 mMol) der gemäss Schritt m) des Beispiels 6 erhaltenen H-Gly-Trp-Gln-Pro-NHEt-TFA gekoppelt. Man erhält 252,9 mg (52%) Reinsubstanz.
Rf = 0,26 Rf = 0,32
Aminosäurenanalyse :
Ser: 0,87 Glu: 2,02 Pro: 0,91 Gly: 1,00 Tyr: 1,12 His: 1,05 Trp: 1,80
Beispiel 8
Bereitung von Injektionen für intramuskuläre, subkutane oder intravenöse Applikation.
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
a) Das Gonadoliberin-Derivat der allgemeinen Formel (I) wird in einer Konzentration von 1-10 mg/ml in destilliertem Wasser, physiologischer Kochsalzlösung oder gepufferter wässriger Lösung gelöst. Die Lösung wird sterilfiltiert und dann in 50-500 (ig Wirkstoff enthaltenden Volumina in Ampullen gefüllt, lyophilisiert, und dann werden die Ampullen verschlossen.
Vor der Anwendung wird die in der Ampulle enthaltene Substanz in 1-10 ml destilliertem Wasser aufgelöst, und von
9 664 968
der Lösung wird eine der notwendigen Dosis entsprechende Menge injiziert.
b) Aus dem Gonadoliberin-Derivat der allgemeinen Formel (I) bereitet man mit einer 0,9% NaCl und 0,9% Benzylal-5 kohol enthaltenden wässrigen Lösung eine Lösung der Konzentration von 20-500 |ig/ml und füllt diese in Ampullen. Die Ampullen werden verschlossen. Die auf diese Weise hergestellten Präparate sind zur unmittelbaren Applikation geeignet.

Claims (10)

664 968
1. Gonadoliberin-Derivate der allgemeinen Formel I
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-X2-X3-Pro-X4 (I),
worin
Xi für Glycylgruppe oder eine natürliche oder synthetische
D-Aminosäuregruppe,
X2 für L-Phenylalanyl- oder L-Tryptophylgruppe oder eine L-Aminosäuregruppe mit 1-4 Kohlenstoffatomen in der Seitenkette,
X3 für eine als Seitenkette eine Alkylgruppe mit 1-4 Kohlenstoffatomen oder eine Carbamylalkylgruppe mit 2-4 Kohlenstoffatomen enthaltende L-Aminosäuregruppe und X4 für Glycylamidgruppe oder eine Alkylamidgruppe mit 1-4
Kohlenstoffatomen steht mit der Einschränkung, dass - falls Xi eine andere Bedeutung hat als Glycylgruppe und X2 für Tryptophylgruppe steht - X3 eine andere Bedeutung als Leucylgruppe hat, sowie deren physiologisch verträgliche Säureadditionssalze und/oder Metallkomplexe.
2. Verbindung nach Anspruch 1, ausgewählt unter Glp-His-Trp-Ser-Tyr-D-Phe-Leu-Gln-Pro-Gly-NHî Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Trp-Gln-Pro-Gly-NHz Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Trp-Leu-Pro-NHCîHs Glp-His-Trp-Ser-Typ-Gly-Phe-Gln-Pro-Gly-NH2 Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Phe-Leu-Pro-Gly-NHa Glp-His-Trp-Ser-Tyr-D-Phe-Leu-Gln-Pro-NHCiHs Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Trp-Gln-Pro-NHCzHs und ihren physiologisch verträglichen Säureadditionssalzen und Metallkomplexen.
2
PATENTANSPRÜCHE
3. Verfahren zur Herstellung von Gonadoliberin-Deriva-ten der allgemeinen Formel I
Glp-His-Trp-Ser-Typ-Xi-X2-X3-Pro-X4 (I),
worin
Xi für Glycylgruppe oder eine natürliche oder synthetische
D-Aminosäuregruppe,
X2 für L-Phenylalanyl- oder L-Tryptophylgruppe oder eine L-Aminosäuregruppe mit 1-4 Kohlenstoffatomen in der Seitenkette,
X3 für eine als Seitenkette eine Alkylgruppe mit 1-4 Kohlenstoffatomen oder eine Carbamylalkylgruppe mit 2-4 Kohlenstoffatomen enthaltende L-Aminosäuregruppe und X4 für Glycylamidgruppe oder eine Alkylamidgruppe mit 1-4
Kohlenstoffatomen steht mit der Einschränkung, dass - falls Xi eine andere Bedeutung hat als Glycylgruppe und X2 für Tryptophylgruppe steht - X3 eine andere Bedeutung als Leucylgruppe hat, und ihren physiologisch verträglichen Säureadditionssalzen und Metallkomplexen, dadurch gekennzeichnet, dass man die Verbindungen der Formel Ia) unter Anwendung der Methode der Festphasensynthese aus den entsprechend geschützten Aminosäuren schrittweise in der gewünschten Reihenfolge durch Koppeln mit Carbodiimid oder über einen aktiven Ester am festen Träger aufbaut und das Endprodukt durch saures oder basisches Abspalten von dem Träger ablöst und die Schutzgruppen vor, während oder nach dem Abspalten vom Träger ebenfalls abspaltet, oder b) die Verbindung der Formel I aus geschützten Aminosäuren durch entsprechende Kombinationen von schrittweiser Kondensation und Fragmentkondensation aufbaut.
4. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass man als festen Träger Benzhydrylaminharz oder BOC-Prolinharz verwendet.
5. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass man das geschützte Peptid durch Behandeln mit Fluorwasserstoff und/oder durch Äthylammonolyse vom Harz ablöst.
6. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass man das Pentapeptidazid der Formel II
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Na (II)
mit einem Tetra- oder Pentapeptid der allgemeinen Formel III
Xi-X2-X3-Pro-X4 (III),
worin die Bedeutung von Xi, X2, X3 und X4 die gleiche wie in Anspruch 3 ist, kondensiert.
7. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass man ein Hexapeptidazid der allgemeinen Formel IV
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-N3 (IV)
mit einem Tri- oder Tetrapeptid der allgemeinen Formel V
X2-X3-Pro-X4 (V).
worin die Bedeutung von Xi, X2, X3 und X4 die gleiche wie in Anspruch 3 ist, kondensiert.
8. Verfahren nach Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, dass man ein Heptapeptidazid der allgemeinen Formel VI
Glp-His-Trp-Ser-Tyr-Xi-X2-N3 (VI),
worin die Bedeutung von Xi und X2 die gleiche wie in Anspruch 3 ist, mit einem Di- oder Tripeptid der allgemeinen Formel VII
X3-Pro-X4 (VII),
worin die Bedeutung von X3 und X4 die gleiche wie in Anspruch 3 ist, kondensiert.
9. Pharmazeutische Präparate, gekennzeichnet durch einen Gehalt an wenigstens einer Verbindung der allgemeinen Formel I, worin die Bedeutung von Xi, X2, X3 und X4 die gleiche wie in Anspruch 1 ist, oder deren physiologisch verträglichen Säureadditionssalzen oder Metallkomplexen.
10. Verfahren zur Herstellung pharmazeutischer Präparate nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, dass man Verbindungen der allgemeinen Formel I, worin die Bedeutung von Xi, X2, X3 und X4 die gleiche wie in Anspruch 1 ist, oder ihre physiologisch verträglichen Säureadditionssalze und Metallkomplexe mit pharmazeutischen Träger- und Hilfsstoffen vermischt.
CH6073/84A 1983-12-23 1984-12-20 Gonadoliberin-derivate und verfahren zu ihrer herstellung. CH664968A5 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU445883 1983-12-23

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CH664968A5 true CH664968A5 (de) 1988-04-15

Family

ID=10968024

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CH6073/84A CH664968A5 (de) 1983-12-23 1984-12-20 Gonadoliberin-derivate und verfahren zu ihrer herstellung.

Country Status (24)

Country Link
US (1) US4647553A (de)
JP (1) JPS60226898A (de)
AT (1) AT394727B (de)
AU (1) AU583803B2 (de)
BE (1) BE901307A (de)
CA (1) CA1268897A (de)
CH (1) CH664968A5 (de)
CZ (1) CZ1021084A3 (de)
DD (1) DD255164A5 (de)
DE (1) DE3446997A1 (de)
DK (1) DK164875C (de)
ES (2) ES8607992A1 (de)
FI (1) FI82255C (de)
FR (1) FR2557114B1 (de)
GB (1) GB2152059B (de)
GR (1) GR82556B (de)
IL (1) IL73902A (de)
IT (1) IT1178775B (de)
LU (1) LU85710A1 (de)
NL (1) NL8403888A (de)
NO (1) NO166449C (de)
SE (1) SE469032B (de)
SU (1) SU1396970A3 (de)
ZA (1) ZA849985B (de)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HU193607B (en) * 1985-07-18 1987-11-30 Innofinance Altalanos Innovaci Process for production of sexual products applyable for natural or artificial insemination for mammates
HU194913B (en) * 1986-01-03 1988-03-28 Innofinance Altalanos Innovaci Process for producing novel gonadoliberin derivatives containing in the sixth position aromatic amino carboxylic acid and medical preparations containing these compounds
HU199694B (en) * 1988-05-10 1990-03-28 Innofinance Altalanos Innovaci Process for producing citostatic pharmaceutical compositions containing gonadoliberin derivatives
CA2257381C (en) * 1996-06-21 2007-08-21 Takeda Chemical Industries, Ltd. Method for producing peptides
DE19813849A1 (de) 1998-03-27 1999-09-30 Degussa Verfahren zur einstufigen Umsalzung und Aufreinigung von Oligopeptiden
US6323179B1 (en) * 1999-10-15 2001-11-27 Theresa Siler-Khodr Chicken GNRH analogs and uses thereof in regulation of fertility and pregnancy
US6635739B2 (en) * 1999-10-15 2003-10-21 Theresa Siler-Khodr Non-mammalian GnRH analogs and uses thereof in regulation of fertility and pregnancy
DE10050831A1 (de) * 2000-10-05 2002-05-02 Veyx Pharma Gmbh Verfahren zum Zyklusstart bei weiblichen Zuchttieren
WO2003016331A2 (en) * 2001-08-17 2003-02-27 Siler-Khodr Theresa M Non-mammalian gnrh analogs and uses thereof in regulation of fertility and pregnancy
CN114805542A (zh) * 2022-04-29 2022-07-29 江苏尤里卡生物科技有限公司 一种基于尿液中促性腺激素的纯化方法

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2211101A1 (de) * 1972-03-08 1973-09-13 Hoechst Ag Neues dekapeptid mit hormon-wirkung
AT347054B (de) * 1973-09-29 1978-12-11 Takeda Chemical Industries Ltd Verfahren zur herstellung von neuen nonapeptidamid-derivaten
US4083967A (en) * 1973-11-01 1978-04-11 Burroughs Wellcome Co. Nona- and decapeptides
DE2617646C2 (de) * 1976-04-22 1986-07-31 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Nonapeptid-amide und Decapeptid-amide mit Gonadoliberin-Wirkung, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Verbindungen enthaltende pharmazeutische Präparate
US4213895A (en) * 1979-03-26 1980-07-22 American Home Products Corporation N-[N-[N-[N-[N-(5-Oxo-L-prolyl)-L-histidyl]-L-tryptophyl]-L-seryl]-L-tyrosyl]glycine azide, an intermediate of the releasing agent of luteinizing hormone (LW) and of follicle stimulating hormone (FSH)
US4377515A (en) * 1979-10-01 1983-03-22 Merck & Co., Inc. Long lasting agonists and antagonists of LH-RH
HU185535B (en) * 1982-05-25 1985-02-28 Mta Koezponti Hivatala Process for preparing new gonadoliberin derivatives
US4443368A (en) * 1982-11-01 1984-04-17 The Salk Institute For Biological Studies Peptides affecting gonadal function
JPS59501985A (ja) * 1982-11-01 1984-11-29 ザ・サルク・インステチュ−ト・フォ−・バイオロジカル・スタディ−ズ 生殖腺機能に影響を及ぼすペプチド類
US4410514A (en) * 1982-12-06 1983-10-18 The Salk Institute For Biological Studies GnRH Agonists
US4530920A (en) * 1983-11-07 1985-07-23 Syntex (U.S.A.) Inc. Nonapeptide and decapeptide analogs of LHRH, useful as LHRH agonist

Also Published As

Publication number Publication date
DK164875B (da) 1992-08-31
BE901307A (fr) 1985-06-19
LU85710A1 (fr) 1986-07-17
IT1178775B (it) 1987-09-16
ES8607992A1 (es) 1986-06-01
FI845051L (fi) 1985-06-24
ZA849985B (en) 1986-04-30
NO166449C (no) 1991-07-24
SE8406554L (sv) 1985-06-24
NO166449B (no) 1991-04-15
SE469032B (sv) 1993-05-03
ES550009A0 (es) 1987-01-01
ATA404284A (de) 1991-11-15
FR2557114A1 (fr) 1985-06-28
DE3446997C2 (de) 1989-12-07
ES8702439A1 (es) 1987-01-01
AU3709884A (en) 1985-07-04
US4647553A (en) 1987-03-03
AU583803B2 (en) 1989-05-11
DK625084A (da) 1985-06-24
ES538988A0 (es) 1986-06-01
FI845051A0 (fi) 1984-12-20
AT394727B (de) 1992-06-10
NL8403888A (nl) 1985-07-16
IT8424183A1 (it) 1985-08-21
IT8424183A0 (it) 1984-12-21
DK625084D0 (da) 1984-12-21
FI82255C (fi) 1991-02-11
FR2557114B1 (fr) 1989-04-14
CA1268897A (en) 1990-05-08
DK164875C (da) 1993-01-11
DD255164A5 (de) 1988-03-23
IL73902A (en) 1988-08-31
IL73902A0 (en) 1985-03-31
GB8432495D0 (en) 1985-02-06
SE8406554D0 (sv) 1984-12-21
GR82556B (en) 1985-04-23
NO845193L (no) 1985-06-24
GB2152059B (en) 1987-04-08
JPS60226898A (ja) 1985-11-12
DE3446997A1 (de) 1985-07-11
CZ1021084A3 (en) 1994-02-16
FI82255B (fi) 1990-10-31
SU1396970A3 (ru) 1988-05-15
GB2152059A (en) 1985-07-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2720245C2 (de) Peptide, Verfahren zu deren Herstellung und diese Verbindungen enthaltende Zusammensetzungen
CH632738A5 (de) Peptide mit gonadoliberin-wirkung und verfahren zu ihrer herstellung.
AT394727B (de) Verfahren zur herstellung von neuen gonadoliberin-derivaten
DE2528935C2 (de) Verfahren zur Herstellung Arginylreste enthaltender Peptide und hierbei eingesetzte Zwischenprodukte
DE2463205C2 (de) Octapeptid und Verfahren zu dessen Herstellung
DE3700166A1 (de) In der 6-stellung einen aromatischen aminocarbonsaeurerest aufweisende nonapeptidaethylamide beziehungsweise decapeptidamide, verfahren zur herstellung derselben und diese enthaltende arzneimittel beziehungsweise vermehrungsbiologisch wirksame mittel sowie ihre verwendung
DE2726276A1 (de) Polypeptid
DE3124818A1 (de) Oxytocin-analoga, ihre herstellung und pharmazeutische mittel
DE2324239C3 (de) Verfahren zur Herstellung von Asparaginylgruppen enthaltenden biologisch aktiven Polypeptiden
DE2830489A1 (de) Psychopharmakologisch wirksame peptide
AT389704B (de) Verfahren zur herstellung von neuen gonadoliberin-derivaten
CH658661A5 (de) Peptidverbindungen.
DE2341775C3 (de) In N-terminaler Stellung den Rest einer Aminooxysäure aufweisende Peptide mit ACTH-Wirkung, Verfahren zu ihrer Herstellung sowie diese Peptide enthaltende Arzneimittel
CH422813A (de) Verfahren zur Herstellung neuer Polypeptide
DE2754770C2 (de) N-Acyltetrapeptidamide, Verfahren zu ihrer Herstellung und diese Verbindungen enthaltende Arzneimittel
DE2727048C2 (de) 8-Norleucyl-ceruletide
DE3876240T2 (de) Sorbin und abgeleitete peptide, die die absorption durch die mucosa erhoehen.
DE2311786A1 (de) Verfahren zur herstellung von peptiden
CH499497A (de) Verfahren zur Herstellung neuer Polypeptide
DE69525641T2 (de) Verfahren zur herstellung von peptidyl-argininaldehyden
AT249282B (de) Verfahren zur Herstellung neuer Heneikosapeptide
CH444178A (de) Verfahren zur Herstellung von B-MSH
AT224621B (de) Verfahren zum vorübergehenden Schutz der Aminogruppe des Aminoalkylrestes von α-(Aminoalkyl)-α-aminoessigsäuren und ihren Derivaten
DE1493559C3 (de) Neue Peptide mit adrenocorticotroper Wirkung und Verfahren zu ihrer Herstellung
CH550774A (de) Verfahren zur herstellung neuer hypocalcaemischer peptide.

Legal Events

Date Code Title Description
PL Patent ceased