中药组合物在制备防治缓解体力疲劳保健食品或药品中的应用 技术领域
本发明涉及一种缓解体力疲劳保健食品及药品的中药组合物, 以及在保健食品或 药品领域中的用途。
背景技术
目前中国专利文献已公开的抗氧化、抗疲劳、降血脂、提高耐缺氧功能的保健食品, 部分产品公开了西洋参、灵芝及其提取物、 冬虫夏草及其提取物或发酵虫草菌粉等为原 料; 如申请号为 02115148. 2的中国专利公开了一种由灵芝、 红景天为主料的具有抗缺 氧、 抗疲劳、 抗衰老、 改善睡眠益气健身的保健茶; 申请号为 96100057. 0的中国专利 公开了一种由灵芝、 山楂为主要原料制成的具有增强免疫功能、 降血脂、 调血压的保健 养生茶; 申请号为 99117565. 4的中国专利公开了一种由冬虫夏草、 灵芝、 人参、 枸杞 为主要原料组成的具有抗疲劳、 抗衰老、 降血脂血糖、 增强血液循环功效的保健茶; 目 前尚没有采用西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉或冬虫夏草三种原料和西洋参、 灵芝、 发酵 虫草菌粉或冬虫夏草三种原料和玫瑰花此四种原料组方制备的抗氧化、抗疲劳、降血脂、 提高缺氧耐受力的保健食品及药品。
发明内容
本发明的目的在于提供一种更为有效的缓解体力疲劳保健食品或药品中药组合物, 本发明的另一目的是提供了含有该中药的组合物在保健食品或药品领域中的新应用。
本发明选择药物西洋参和 /或人参、 灵芝、 发酵虫草菌粉进行组合, 将这些药物组 合使各药物功效产生协同作用, 从而能够更加有效增强缓解体力疲劳功能; 从西洋参或 人参、 冬虫夏草、 灵芝三味药的归经可以看出, 心肝脾肺肾都有, 达到五脏并调; 西洋 参, 味辛、 甘、 微苦、 性温, 最明显的功效就是行气解郁, 和血, 止痛; 人参, 甘、 微 苦, 微温; 灵芝, 滋补强壮, 扶正固本; 冬虫夏草, 甘、 平, 归肺、 肾经, 益肾补肺, 同西洋参或人参一起助灵芝扶正固本。
为了获得更佳疗效, 本发明的药物在上述药物的基础上可以加入玫瑰花, 达到协同 增效的作用; 因为玫瑰花色能和血, 香能行气, 有疏肝解郁和活血作用, 起到协调、 推 动和平衡的作用, 为佐使药, 四药合用, 五脏并调、 温凉互补、 气血双补、 补而不燥,
滋而不腻, 平补微调、 功效平和, 缓解体力疲劳功效更强, 疗效更佳, 为了达到更好的 疗效, 还可以添加冬虫夏草进行组合, 增强缓解体力疲劳功效最强, 疗效最佳。
本发明所述药物的各种组合和各组分的用量在下述重量份范围具有较好的缓解体 力疲劳的功效- 本发明组合物含有下述原料或者由下列原料的水和 /或醇提物作活性成份和药学上 可接受的附加剂组成: 西洋参和 /或人参 5〜150份、 冬虫夏草广 120份和 /或发酵虫草 菌粉 1〜90份、 灵芝 5〜160份;
优选西洋参和 /或人参 10〜90份 、灵芝 20〜90份、 冬虫夏草 3~90份和 /或发酵虫 草菌粉 3〜60份; 优选西洋参和 /或人参 10〜50份、 灵芝 10〜50份、 冬虫夏草 1(Γ70 份和 /或发酵虫草菌粉 10〜50份; 更优选西洋参和 /或人参 30份、 灵芝 40份、 冬虫夏 草 6. 7份和 /或发酵虫草菌粉 20份。
本发明的药物还可以- 含有下述原料或者由下列原料的水和 /或醇提物作活性成份和药学上可接受的附加 剂组成: 西洋参和 /或人参 5〜150份、 冬虫夏草广 120份和 /或发酵虫草菌粉 1〜90份、 灵芝 5〜160份、 玫瑰花 5〜90份;
优选西洋参和 /或人参 10〜90份 、灵芝 20〜90份、 冬虫夏草 3^90份和 /或发酵虫 草菌粉 3〜60份、玫瑰花 10〜60份;优选西洋参和 /或人参 10〜50份、灵芝 10〜50份、 冬虫夏草 10〜70份和 /或发酵虫草菌粉 10〜50份、玫瑰花 10〜40份; 更优选西洋参和 /或人参 30份、 灵芝 40份、 冬虫夏草 6. 7份和 /或发酵虫草菌粉 20份、 玫瑰花 30份。
本发明组合物中还可以添加其他不减弱本发明功效的下述重量份的原料或含有下 述原料或者由下列原料的水和 /或醇提物作活性成份和药学上可接受的附加剂组成: 如 太子参 3〜300份、人参叶 10〜120份、党参 3〜160份、黄芪 3〜200份、菟丝子 5〜150 份中的一种或其任意组合。
本发明还涉及含有上述组合物在作为制备防治缓解体力疲劳保健食品或药品中的 应用。
本发明还涉及含有上述组合物在作为制备防治降血脂保健食品或药品中的应用。 本发明还涉及含有上述组合物在作为制备防治抗氧化保健食品或药品中的应用。 本发明还涉及含有上述组合物在作为制备防治提高耐缺氧保健食品或药品中的应 用。
本发明还涉及由西洋参 10〜50重量份、灵芝 10〜50重量份、发酵虫草菌粉 10〜50
重量份组成的药物组合物, 作为制备治疗或预防缓解体力疲劳保健食品及药品中的应 用。
还涉及由西洋参 10〜50重量份、 灵芝 10〜50重量份、 发酵虫草菌粉 10〜50重量 份组成的药物组合物在制备治疗或预防降血脂保健食品及药品中的应用。
还涉及由西洋参 10〜50重量份、 灵芝 10〜50重量份、 发酵虫草菌粉 10〜50重量 份组成的药物组合物在制备治疗或预防抗氧化保健食品及药品中的应用。
还涉及由西洋参 10〜50重量份、 灵芝 10〜50重量份、 发酵虫草菌粉 10〜50重量 份、 玫瑰花 10〜40重量份组成的药物组合物, 作为制备治疗或预防缓解体力疲劳保健 食品及药品中的应用。
还涉及由西洋参 10〜50重量份、 灵芝 10〜50重量份、 发酵虫草菌粉 10〜50重量 份、 玫瑰花 10〜40重量份组成的药物组合物, 作为制备治疗或预防降血脂保健食品及 药品中的应用。
还涉及由西洋参 10〜50重量份、 灵芝 10〜50重量份、 发酵虫草菌粉 10〜50重量 份、 玫瑰花 10〜40重量份组成的药物组合物, 作为制备治疗或预防抗氧化保健食品及 药品中的应用。
本发明的灵芝,为担子菌类多孔菌科灵芝属植物赤芝 Gmode醒 1 ucidumiley ss. ex Fr. )或紫芝 Ganoderma sinense Zhao , Xu et Zhang的干燥子实体, 性味甘、 平, 归心、 肺、 肝、 肾经, 具有滋补强壮、 宁心安神的功能; 本发明中所述的人参为五加科植物人 参 Panax ginseng C. A. Mey.的干燥根和根茎, 可以是各种种类的参, 如园参、 山参、 生晒参、 生晒山参、 白糖参、 红参; 还可以选用人参叶替代西洋参或人参, 所述的人参 叶为五加科植物人参 Panax ginseng C. A. Mey.的干燥叶; 本发明中所述的西洋参又名 美国参、 花旗参、 洋参、 广东参, 系五加科植物西技洋参/ ¾ ?a gi/i 2i7i/e/ i™ L. 的 干燥根, 性味甘、 微苦, 凉, 归心、 肺、 肾经, 具有补气养阴, 清热生津的功能; 本发 明中所述的冬虫夏草为麦角菌科真菌冬虫夏草菌 Cordyceps sinensi s (Berk. ) sace. 寄 生在蝙蝠蛾科昆虫幼虫上的子座和幼虫尸体的干燥复合体。
本发明中所述的发酵虫草菌粉是从天然冬虫夏草 Cordyceps sinensis (Berk. ) sace. 中分离出来的菌种经发酵培养的产物, 如以下菌种: 蝙蝠蛾拟青霉 Paeci longces hepial l i Chen et Dai, sp. nov; 中华被毛抱 Hirsutel la sinensis Liu, Guo, Yu et Zeng, sp. nov; 麦角菌禾斗真菌冬虫夏草头抱 Cephalosporium sinensi s Chen sp. nov; 蝙 蝠蛾被孢酶 Mortiscrsl la hepial id C. T. & B. l iu; 中国拟青霉 Paeci lomyces sinensis
Chen, Xiao et Shi, sp. nov; 中国弯颈霉 Tolypocladi醒 sinensis C. Ian Li; 中国头孢 霉 Cephalosporium sinens Chen sp. nov; 蝙蝠蛾柱霉 Scytalidium hepialii C. L. Li; 中国金抱毒 Chrysosporium sinens Z. Q. liang; 中国轮枝抱 Vert ici Ilium sinens Wamg sp. nov; 顶抱头抱霉 Cephalosporium acremonium Corda, Icones Fungorum; 中华束丝 孢 Synnematium sinensis Yin & Shen ; 虫 花 棒 束 抱 Isaria farinose (Holmsk. )Fr. Systema Mycologicum ; 金 龟 子 绿 僵 菌 Metarhizium anisopliae (Metsch) Sorokin; 蝙蝠蛾被毛孢 Hirsutella hepialid Chen et Shen; 虫 草簇孢 Sporothrix insectorum de Hong & H.C.Evans ; 粉红胶霉 Gliocladium roseum(link) Thorn; 孢霉属真菌 Mortierella SP。
本发明中所述的玫瑰花是蔷薇科植物玫瑰(Wosari^oss Thumb)的干燥花蕾, 味辛、 甘、 微苦、 性温, 最明显的功效就是行气解郁, 和血, 止痛, 药性温和。
党参为桔梗科植物党参 Codonopsis pilosula (Franch. ) Nannf. 、 素花党参
Codonopsis pilosula Nannf. var. modesta (Nannf . ) L. T. Shen 或川党参 Codonopsis tangshen Oliv.的干燥根。
菟丝子为旋花科植物南方菟丝子 Cuscuta australis.或菟丝子 Cuscuta chinensis
Lam. 的干燥成熟种子; 本发明中所述的黄芪为豆科植物蒙古黄芪 Astragalus membranaceus (Fisch)Bge. var. mongholicus (Bge) Hsiao 或膜英黄 Astragalus membranaceus (Fisch) Bge.的干燥根 。 本发明所述中药组合物的制备工艺, 包括以下步骤- 称取下列中药材作原料
1) 人参和 /或西洋参 5〜150份、 灵芝 5〜160份、冬虫夏草广 120份和 /或发酵虫 草菌粉 1〜90份、 或玫瑰花 5〜90;
2) 用醇或水对上述药材回流提取, 得到提取液做活性成份, 加入附加剂, 制成各 种剂型。
本发明所述中药组合物的制备工艺, 也可以包括以下步骤-
1)将西洋参、灵芝、冬虫夏草和 /或发酵虫草菌粉、玫瑰花加甲醇或乙醇进行提取, 提取液回收甲醇或乙醇, 得到提取物 I;
2) 将上述药渣挥干醇后, 加水进行提取, 得到提取物 II ;
3) 合并提取物 I和提取物 II, 过滤, 滤液浓缩至适量, 加入药学上常用辅料, 采 用药剂学上常规工艺制成所需制剂。
本发明所述中药组合物的制备工艺, 也包括以下步骤-
1) 原料准备: 按配方备好所述的原料, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布 袋中。
2) 提取浓缩:将步骤 1中处理好的原料加水浸泡 1小时后加热煎煮 1〜3次,每次 1〜2小时, 合并提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 备用。
3) 制备制剂: 将步骤 2中所得的浓缩液单独或加入医学上可接受的辅料, 采用药 剂学上常规工艺制成所需制剂。
本发明的药物组合物可以采用中药制剂常规方法制备成任何常规剂型, 加入药 学上可接受的任意一种辅料, 包括但不限于片剂、 颗粒剂、 胶囊剂、 口服液、 糖浆剂、 丸剂等; 本发明药物的活性组份也可以加入制备各种剂型所需的各种常规辅料, 如崩解 剂、 润滑剂、 表面活性剂、 稀释剂、 赋形剂、 吸附载体、 粘合剂等以常规的中药制剂方 法制备成任何一种常用口服剂型。
本发明西洋参和 /或人参、 灵芝、 冬虫夏草组成的药物组合物比西洋参、 灵芝、 发 酵虫草菌组成的组合物缓解体力疲劳、 降血脂、 抗氧化、 提高耐缺氧疗效更好。
本发明西洋参和 /或人参、 灵芝、 冬虫夏草、 玫瑰花组成的药物组合物比西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌、 玫瑰花组成的组合物缓解体力疲劳、 降血脂、 抗氧化、 提高耐缺氧 疗效更好。
本发明西洋参和 /或人参、 灵芝、 冬虫夏草、 发酵虫草菌粉组成的药物组合物比西 洋参、 灵芝、 发酵虫草菌组成的组合物缓解体力疲劳、 降血脂、 抗氧化、 提高耐缺氧疗 效更好。
本发明西洋参和 /或人参、 灵芝、 冬虫夏草、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花组成的药物组 合物比西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌、 玫瑰花组成的组合物在缓解体力疲劳、 降血脂、 抗 氧化、 提高耐缺氧疗效更显著。
为了更好地理解本发明的实质, 下面将用由人参或西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉组 成的药物组合物的动物实验及结果来说明其在缓解体力疲劳、 降血脂、抗氧化、 提高耐 缺氧保健食品或药品领域中的新用途, 添加冬虫夏草或用冬虫夏草替代发酵虫草菌粉, 可增加疗效, 如各组合物中添加玫瑰花可达到协同增效的作用。
同样地加入人参、 太子参、 党参、 黄芪、 菟丝子等任一种或其任意组合均能达到有 同样的药理作用, 区别在于使用量不同。
一、 本发明所述中药组合物(西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉)经动物试验证明, 具 有缓解体力疲劳作用, 且无毒副作用, 其详细说明如下- 1. 材料与方法
1. 1 样品来源及处理: 本发明中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉) 口服液复 合粉由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, 临用前用蒸馏水配制成所 需浓度。
1. 实验动物及环境: 清洁级健康雄性 ICR小鼠, 体重 18-22g, 由北京大学 (医学部) 实验动物中心提供(动物合格证号: 医动字 SCXK (京) -2006-0008)。 清洁级动物房饲 养(动物实验环境设施(SPF)合格证书: 医动字第 01-2055), 饲养环境温度 21〜23°C, 相对湿度 50〜60%。
1. 3 实验方法
1. 3. 1 动物分组: 雄性 ICR小鼠 160只, 根据体重随机分为 4组, 每组 40只。 设立空 白对照组、本发明中药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组, 各组动物再分为 4个 亚组, 每组 10只。
1. 3. 2剂量设计: 本发明中药组合物 I口服液每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体 重, 120g总生药材配制成 1000ml本发明中药组合物口服液, lg本发明中药组合物 I口 服液复合粉干粉相当于总生药材 11. 41g, 换算得到本发明中药组合物 I口服液复合粉 每人每日推荐摄入量为: 2. 10g/60kg体重。 由此推算出小鼠每日摄入量为: 低剂量组, 0. 175g/kg体重; 中剂量组, 0. 350g/kg体重; 高剂量组, 1. 050g/kg体重, 分别相当 于人每日摄入量的 5、 10 和 30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度 (0. 0175g/ml、
0. 0350g/m 0. 1050g/ml ) 的灌胃液进行实验, 小鼠灌胃量按 0. lml/10g体重计算, 受 试物组每日分别给予 3个剂量的本发明中药组合物 I口服液复合粉灌胃液,空白对照组 给予等体积蒸馏水灌胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以普通饲料, 自由 进食、 饮水。 30天后对各亚组小鼠进行缓解体力疲劳功能检验。
1. 3. 3 负重游泳实验: 各组第 1亚组 10只小鼠末次给予受试样品 30min后, 于鼠尾根 部负荷 5%体重的铅皮, 然后置小鼠在游泳箱中游泳 (水深 2s30cm, 水温 25°C±1. 0°C ), 记录小鼠自游泳开始至死亡的时间, 作为小鼠负重游泳时间。
1. 3. 4血清尿素氮测定: 各组第 2亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 在温度为 30 °C的水中不负重游泳 90min, 休息 60min后拔眼球采全血约 0. 5ml ,置 4°C冰箱约 3h, 血凝固后 2000prn/min离心 15min, 分离血清测尿素氮含量。 用奥林巴斯 AU400全自动
生化分析仪 (日本)测定血清尿素氮, 试剂采用日本第一化学株式会社试剂。
1. 3. 5肝糖原测定: 各组第 3亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 处死动物, 取 肝脏经生理盐水漂洗后用滤纸吸干,精确称取肝脏 100mg,加入 8mL TCA,每管匀浆 lmin, 将匀浆液倒入离心管, 以 3000转 /min离心 15min,将上清液转移至另一试管内。取 lmL 上清液放入 10mL离心管中, 每管加入 95%的乙醇 4mL, 充分混匀至两种液体间不留有界 面。 用封口膜将离心管口封住, 室温下竖立放置过夜。 沉淀完全后, 将试管于 3000转 /min离心 15min, 小心倒掉上清液并使试管倒立放置 10min。 然后用 2mL蒸馏水溶解糖 原, 用蒽酮法测定肝糖原含量。
1. 3. 6 乳酸测定: 各组第 4亚组 10只小鼠末次灌胃 30min后, 采尾血 20μ1, 然后小鼠 不负重在温度为 30°C的水中游泳 10min, 于游泳后 Omin和 20min各分别采血 20μ1, 将 三次采得的血样分别加入 0. 48mL 1% NaF溶液中充分混匀至透明, 然后加入 1. 5mL蛋白 沉淀剂, 振荡混匀, 于 3000转 /min离心 10min, 取上清液测定乳酸含量, 并计算 3个 时间点血乳酸曲线下面积。
血乳酸曲线下面积 = 1/2* (游泳前血乳酸值+游泳后 Omin 的血乳酸值) *10+1/2* (游泳 后 Omin的血乳酸值 +游泳后休息 20min的血乳酸值) *20
1. 3. 7 统计方法: 实验数据以 ϊ±3 表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时各受 试物剂量组测定指标与空白对照组之间的差异, Ρ〈0. 05判断为差异具有显著性。
2. 结果-
2. 1 动物体重增长情况:本发明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组小鼠体重与空白对 照组比较差异无显著性, 见表 1。
表 1 本发明中药组合物 I口服液复合粉对小鼠体重增长的影响 (g, ΐ+s)
剂量 动物数
组别 初始体重 终末体重
(g/kgbw) (只)
第 空白对照组 0. 000 10 20. 28 ± 2· 14 42. 13 ± 4· 67 一 低剂量组 0. 175 10 20. 44 ± 1· 55 40. 71 ± 3· 55 亚 中剂量组 0. 350 10 20. 46 ± 1· 96 42. 97 ± 2· 55 组 高剂量组 1. 050 10 19. 78 ± 1· 30 41. 11 ± 3· 76 第 空白对照组 0. 000 10 19. 76 ± 1· 28 41. 80 ± 3· 72 一 低剂量组 0. 175 10 19. 84 ±0· 90 42. 00 ± 4. 04
亚 中剂量组 0.350 10 18.95 ±1.39 41.10 ±3.67 组 高剂量组 1.050 10 19.42 ±1.42 41.69 ±3.98 第 空白对照组 0.000 10 19.48 ±0.74 41.55 ±1.77 三 低剂量组 0.175 10 18.62 ±1.39 40.89 ±2.03 亚 中剂量组 0.350 10 18.88 ±1.58 41.33 ±3.80 组 高剂量组 1.050 10 18.89 ±1.26 42.43 ±3.39 第 空白对照组 0.000 10 18.88±1. 09 40.53±1· 73 四 低剂量组 0.175 10 18.23±1· 38 41.17±3· 28 亚 中剂量组 0.350 10 18.44±1· 43 41.04±2· 02 组 高剂量组 1.050 10 18.82±1· 18 40.69 ±3.79
2.2本发明巾药组合物 I口服液复合粉低、 巾、 高剂量组小鼠负重游泳时间均明显高于 空白对照组 ( <0.05), 见表 2。
本发明中药组合物 I口服液复合粉对小鼠负重游泳时间的影响 ( Ϊ士 s) 组别 剂量 动物数 负重游泳时间
(g/kgbw) (只) (min)
空白对照组 0.000 10 3.53±1· 19
低剂量组 0.175 10 4.88 ±1.98* 中剂量组 0.350 10 5.35±1· 17* 高剂量组 1.050 10 6.23 ±0.98*
*: 表示与空白对照组比较差异有显著性 ( 0.05)
2.3本发明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组小鼠不负重游泳 90min后, 血清尿素氮 水平与空白对照组比较未见明显差异 ( 0.05), 见表 3。
2.4 本发明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组小鼠肝糖原水平均明显高于空白对照 组, 且差异具有显著性 ( 0.05), 见表 3。
表 3本发明中药组合物 I口服液复合粉对小鼠血清尿素氮和肝糖原的影响 ( Ϊ士 s) 剂量 动物数 尿素氮 肝糖原 组别
(g/kgbw) (只) (醒 ol/L) (mg/g肝组织) 空白对照组 0.000 10 10.59±1.32 15.82±5.64 低剂量组 0.175 10 10.03±1.62 22.31±7.63*
0.350 10 10.60±1· 54 26.40 ±7.28:
1.050 10 10.08±1.37 27.34±6.35
*: 表示与空白对照组比较差异有显著性 ( 0.05)
2.5本发明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组小鼠三个时间点血乳酸曲线下面积均明 显小于空白对照组, 且差异具有显著性 ( 0.05); 各剂量组小鼠游泳后即刻血乳酸水 平及休息 20min后血乳酸水平显著低于空白对照组 ( 0.05), 见表 4。
表 4 本发明中药组合物 I口服液复合粉对小鼠血乳酸的影响 (mg/L, x±s) 剂量
动物数 游泳后 游泳后
组别 (g/kgb 游泳前 曲线下面积
(只) Omin 20min
w)
空白对照 0.000 200.00 + 577.21士 322.24士 12883.88士
10
组 54.75 53.21 54.77 1031.09 低剂量组 0. 175 216.95 + 500. 10 + 259. 17士 11177.91士
10
60.20 78.64* 45.66* 1660.26* 中剂量组 0.350 184.77 + 488.21 + 224.69士 10493.86 +
10
58.52 81.47* 47. 16* 1842.34* 高剂量组 1.050 194.56土 450.54士 207.90 + 9809.88 +
10
43.40 83.26* 42.63* 1490.42*
*: 表示与空白对照组比较差异有显著性 ( 0.05)
3. 结论:
根据本发明中药组合物 I口服液复合粉人群推荐日摄入量 2. 10g/60kg体重扩大 5、 10和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 0. 175g、 0.350、 1.050g/kg体重, 另设空白 对照组。采用清洁级健康雄性 ICR小鼠连续灌胃给予受试物, 30天后进行实验并检测相 关指标。 实验结果以 P〈0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研究表明: 本发明中 药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组均可显著减少小鼠不负重游泳前及游泳后 Omin和 20min3次血乳酸测定曲线下的面积, 显著升高小鼠静息状态下的肝糖原水平, 并且本发明中药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组小鼠负重游泳时间显著高于空 白对照组, 根据中华人民共和国卫生部 《保健食品检验与评价技术规范 (2003)》 中缓 解体力疲劳功能的结果判定标准,认为本发明中药组合物 I口服液复合粉具有缓解体力 疲劳功能。
二、 本发明所述中药组合物 π (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花) 口服液经 动物试验证明, 具有缓解体力疲劳作用, 且无毒副作用, 其详细说明如下-
1. 材料与方法
1. 1 样品来源及处理: 受试药为中药组合物 Π口服液复合粉(西洋参、 灵芝、 发酵虫草 菌粉、玫瑰花)由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg复合粉干粉 相当于总生药材 12. 56g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。 中药组合物 I复合粉(西洋 参、 灵芝、 发酵虫草菌粉) 由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg 复合粉干粉相当于总生药材 11. 41g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。
1. 2 实验动物及环境: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动 物中心提供,许可证号: SCXK (赣) 2006— 0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环境 许可证: SYXK (赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23°C, 相对湿度 50〜60%。
1- 3 实验方法
1. 3. 1 动物分组: 雄性昆明种小鼠 200只, 根据体重随机分为 4组, 每组 50只。 设立 空白对照组、 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组, 中药组合物 I复合粉组, 各组动物再分为 4个亚组, 每组 10只。
1. 3. 2 剂量设计: 受试药中药组合物 II口服液复合粉每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml中药组合物 II口服液, lg复合粉干粉 相当于总生药材 12. 56g, 换算得到中药组合物 II口服液复合粉每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重。 由此推算出小鼠每日摄入量为: 低剂量组, 2. 0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4. 0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入 量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度 (0. 0159g干粉, /ml、 0. 0318g干 粉 /ml、 0. 0995g干粉 /ml ) 的灌胃液进行实验, 小鼠灌胃量按 0. lml/10g体重计算。 中 药组合物 I复合粉每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml中药组合物 II口服液, lg中药组合物 I复合粉干粉相当于总生药材 11. 41g, 中 药组合物 I组给予中剂量 4. 0g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品 以蒸馏水配制成 0. 0350g干粉 /ml灌胃液进行实验, 灌胃量按 0. lml/lOg体重计算。 空 白对照组给予等体积蒸馏水灌胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以普通饲 料, 自由进食、 饮水。 30天后对各亚组小鼠进行缓解体力疲劳功能检验。
1. 3. 3 负重游泳实验: 各组第 1亚组 10只小鼠末次给予受试样品 30min后, 于鼠尾根 部负荷 5%体重的铅皮, 然后置小鼠在游泳箱中游泳 (水深 30cm, 水温 25°C±1. 0°C ),
记录小鼠自游泳开始至死亡的时间, 作为小鼠负重游泳时间。
1. 3. 4血清尿素氮测定: 各组第 2亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 在温度为 30°C的水中不负重游泳 90min, 休息 60min后拔眼球采全血约 0. 5ml,置 4°C冰箱约 3h, 血凝固后 2000prn/min离心 15min, 分离血清测尿素氮含量。 用奥林巴斯 AU400全自动 生化分析仪 (日本)测定血清尿素氮, 试剂采用日本第一化学株式会社试剂。
1. 3. 5 肝糖原测定: 各组第 3亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 处死动物, 取 肝脏经生理盐水漂洗后用滤纸吸干,精确称取肝脏 100mg,加入 8mL TCA,每管匀浆 lmin, 将匀浆液倒入离心管, 以 3000转 /min离心 15min,将上清液转移至另一试管内。取 lmL 上清液放入 10mL离心管中, 每管加入 95%的乙醇 4mL, 充分混匀至两种液体间不留有界 面。 用封口膜将离心管口封住, 室温下竖立放置过夜。 沉淀完全后, 将试管于 3000转 /min离心 15min, 小心倒掉上清液并使试管倒立放置 10min。 然后用 2mL蒸馏水溶解糖 原, 用蒽酮法测定肝糖原含量。
1. 3. 6 乳酸测定: 各组第 4亚组 10只小鼠末次灌胃 30min后, 采尾血 20μ1, 然后小鼠 不负重在温度为 30°C的水中游泳 10min, 于游泳后 Omin和 20min各分别采血 20μ1, 将 三次采得的血样分别加入 0. 48mL 1% NaF溶液中充分混匀至透明, 然后加入 1. 5mL蛋白 沉淀剂, 振荡混匀, 于 3000转 /min离心 10min, 取上清液测定乳酸含量, 并计算 3个 时间点血乳酸曲线下面积。
血乳酸曲线下面积 = 1/2* (游泳前血乳酸值 +游泳后 Omin 的血乳酸值) *10+1/2* (游泳 后 Omin的血乳酸值 +游泳后休息 20min的血乳酸值) *20
1. 3. 7 统计方法: 实验数据以 i±s 表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时各受 试物剂量组测定指标与空白对照组之间的差异, P<0. 05判断为差异具有显著性, P<0. 01 判断为差异具有极显著性。
2. 结果:
2. 1 动物体重增长情况: 与空白对照组比较, 中药组合物 Π口服液复合粉各剂量组小鼠 体重无显著性差异, 与中药组合物 I比较, 中药组合物 II口服液复合粉各剂量组小鼠体 重无显著性差异, 结果见表 1。
表 1 中药组合物 II口服液复合粉对小鼠体重增长的影响 (g, +s )
剂量
动物数
组别 (g生药 初始体重 终末体重
(只)
/kgbw)
束 空白对照组 0.0 10 20.66±1.42 42.83±4· 21 一 中药组合物 I组 4.0 10 20.19±1. 50 41.65±4.02 亚 受试药低剂量组 2.0 10 20.40±1. 38 41.71±4.28 组 受试药中剂量组 4.0 10 20.41±1. 63 42.55±2.96 受试药高剂量组 12.0 10 20.12±1. 53 42.91±3.86 第 空白对照组 0.0 10 20.34±1. 62 41.80±4.70 一 中药组合物 I组 4.0 10 20.25±1. 57 42.25±3· 67 亚 受试药低剂量组 2.0 10 20.14±1. 37 42.18±4· 34 组 受试药中剂量组 4.0 10 20.05±1. 59 41.16±3· 92 受试药高剂量组 12.0 10 20.42±1. 54 42.69±4.98 第 空白对照组 0.0 10 20.48 ±0.96 42.55±4· 77
― 中药组合物 I组 4.0 10 20.22±0.98 42.29 ±3.08 亚 受试药低剂量组 2.0 10 20.15±1.39 41.89±4.13 组 受试药中剂量组 4.0 10 20.18±1.52 41.33±3.32 受试药高剂量组 12.0 10 20.29±1.23 42.34±4.37 第 空白对照组 0.0 10 20.31±1. 19 42.53±3· 72 四 中药组合物 I组 4.0 10 20.09±1. 46 41.45±3.48 亚 受试药低剂量组 2.0 10 20.23±1. 35 41.58±3.68 组 受试药中剂量组 4.0 10 20.41±1. 03 41.74±4· 02 受试药高剂量组 12.0 10 20.20±1. 26 41.69±3· 82
2.2 对小鼠负重游泳时间的影响: 与空白对照组比较, 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组及中药组合物 I组小鼠负重游泳时间均明显升高 ( 0.05), 与中药组合 物 I组相比, 中药组合物 II口服液复合粉中、 高剂量组小鼠负重游泳时间均明显升高 (尸〈0.05), 结果见表 2。
表 2 中药组合物 II口服液复合粉对小鼠负重游泳时间的影响 ( i±s) 组别 剂量 动物数 负重游泳时间
(g生药 /kgbw)
〔只) (min)
空白对照组 0.0 3.78 ±0.88 中药组合物 I组 4.0 4.89±1.17*
受试药低剂量组 2.0 10 4.83±1.07* 受试药中剂量组 4.0 10 5.84±0.90 受试药高剂量组 12.0 10 6.49 ±1.08
与空白对照组相比, * 0.05; 与中药组合物 I组相比, A 0.05。
2.3对小鼠血清尿素氮的影响: 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组及 中药组合物 I组小鼠不负重游泳 90min后, 血清尿素氮水平与空白对照组比较未见明 显差异( 0.05),中药组合物 II口服液复合粉低、中、高剂量组小鼠不负重游泳 90min 后, 血清尿素氮水平与中药组合物 I组比较未见明显差异 ( 0.05), 结果见表 3。 2.4对小鼠肝糖原的影响: 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组及中药组合物 I组各组小鼠肝糖原水平明显高于空白对照组, 且差异具有显著性 (尸〈0.05), 中药组 合物 II口服液复合粉中、高剂量组小鼠肝糖原水平明显高于中药组合物 I组, 且差异具 有显著性 (尸〈0.05, 0.01), 结果见表 3。
表 3 中药组合物 II口服液复合粉对小鼠血清尿素氮和肝糖原的影响 ( i±s)
(只) (mmol/L)
空白对照组 0.0 10 10.22±1.68 15.78±3.60 中药组合物 1组 4.0 10 10.56 ±2· 02 20.91±3· 97 受试药低剂量组 2.0 10 10.80 ±2.62 21.28±3.91* 受试药中剂量组 4.0 10 10.44±1· 76 24.51 ±3.25*Α 受试药高剂量组 12.0 10 10.60±1.78 25.21 ±2.58*" 与空白对照组相比, * 0.05; 与中药组合物 I组相比, ▲ 7X0.05, 0.01。
2.5 对小鼠血乳酸的影响:中药组合物 Π口服液复合粉各剂量组及中药组合物 I组小鼠 游泳后即刻血乳酸水平、休息 20min后血乳酸水平及曲线下面积均显著低于空白对照组
( 0.0D, 中药组合物 Π口服液复合粉中、 高剂量组小鼠游泳后即刻血乳酸水平、 休 息 20min 后血乳酸水平及曲线下面积均显著低于中药组合物 I对照组 ( 0.05, «0.01), 见表 4。
表 4 中药组合物 II口服液口服液复合粉对小鼠血乳酸的影响 (mg/L, x+s)
/kgbw)
0. 0 10 208. 50 + 324. 40 ± 12991. 00士 空白对照组 580. 30 ± 57. 45
37. 50 35. 61 610. 16 中药组合物 4. 0 213. 9士 497. 90 + 266. 00 + 11 198. 00士
I组 40. 47 52. 11** 29. 89 907. 84 受试药低剂 2. 0 10 220. 80 + 498. 80 + 255. 80 + 11 144. 00 + 量组 37. 95 73. 33** 24. 95" 1192. 90" 受试药中剂 4. 0 10 203. 30 + 445. 60 + 234. 60 + 10096. 50士 量组 38. 80 46. 77* 36. 84**A 1224. 14* 受试药高剂 12. 0 10 211. 90土 421. 30 + 207. 80 + 9457. 00士 量组 34. 89 83. 26**" 20. 50**" 769. 70**" 与空白对照组相比, * 0. 05; 与中药组合物 I组相比, ▲ 0. 05, ▲▲ K0. 1 .
3. 结论:
根据本发明中药组合物 II口服液复合粉人群推荐日摄入量 24. 0g生药 /60kg体重扩 大 5、 10和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 2. 0g、 4. 0、 12. 0g生药 /kg体重, 另 设空白对照组与中药组合物 I对照组。采用清洁级健康雄性昆明种小鼠连续灌胃给予受 试物, 30天后进行实验并检测相关指标。 实验结果以 P〈0. 05判断为差异具有显著性及 P〈0. 01判断为差异具有极显著性。经动物实验研究表明:中药组合物 II U服液复合粉低、 中、高剂量组均可显著减少小鼠不负重游泳前及游泳后 Omin和 20min3次血乳酸测定曲 线下的面积, 显著升高小鼠静息状态下的肝糖原水平, 并且中药组合物 II口服液复合粉 低、中、高剂量组小鼠负重游泳时间显著高于空白对照组。与中药组合物 I对照组相比, 中药组合物 II口服液复合粉中、高剂量组均可显著减少小鼠不负重游泳前及游泳后 Omin 和 20min3次血乳酸测定曲线下的面积, 显著升高小鼠静息状态下的肝糖原水平, 并且 中药组合物 II口服液复合粉中、高剂量组小鼠负重游泳时间显著高于中药组合物 I对照 组, 认为中药组合物 II口服液复合粉具有缓解体力疲劳功能, 且其缓解体力疲劳功能优 于中药组合物 I对照组。
三、 本发明中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉)经动物试验证明, 具有 辅助降血脂功能, 且无毒副作用, 动物实验报告说明如下- 1.材料与方法
1.1 样品来源及处理: 本发明中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉) 口服液复 合粉由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, 临用前用蒸馏水配制成所
需浓度。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性 SD大鼠, 体重 150-100g, 由北京大学医学部实 验动物中心提供(批准号为 SCXK11-00-0004)。清洁级动物房饲养(动物实验环境设施 ( SPF)合格证书: 医动字第 01-2055 ), 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。 1.3 实验方法
1.3.1动物分组: 雄性 SD大鼠 50只, 体重 150-200g, 基础饲料适应性喂养一周后, 取尾 血, 测定血清总胆固醇 (TC)、 甘油三酯 (TG) 和高密度脂蛋白胆固醇 (HDL-C)。 根 据 TC水平和体重将大鼠分为 5组, 每组 10只。 设基础饲料对照组、 高脂饲料对照组 以及低、 中、 高三个剂量组。
1.3.2剂量设置: 本发明中药组合物 I口服液每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml本发明中药组合物口服液, lg本发明中药组合物 I口服液 复合粉干粉相当于总生药材 11.41g,换算得到本发明中药组合物 I口服液复合粉每人每 日推荐摄入量为: 2.10g/60kg体重。由此推算出大鼠每日摄入量为:低剂量组, 0.175g/kg 体重; 中剂量组, 0.350g/kg体重; 高剂量组, 1.050g/kg体重, 分别相当于人每日摄入 量的 5、 10和 30倍。 实验开始后, 除基础饲料对照组喂词基础饲料外, 其余各组大鼠 均喂词高脂饲料(高脂饲料组分: 78.8%基础饲料, 1%胆固醇, 10%蛋黄粉, 10%猪油, 0.2%胆盐)。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度 (0.0175g/ml、 0.0350g/mK 0.1050g/ml ) 的灌胃液进行实验, 灌胃量为 lml/100g体重, 受试物组每日分别给予 3个剂量的本发明 中药组合物 I口服液复合粉灌胃液, 基础伺料对照组、 高脂饲料对照组给予等体积蒸馏 水灌胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。每周称体重。 各组动物自由进食、饮水。 30天后, 股动脉取血, 分离血清检测相关指标。
1.3.3 检验指标: TC (酶法)、 TG (酶法)、 HDL-C (直接法), 采用奥林巴斯 AU400全 自动生化分析仪 (日本)测定, 试剂采用日本第一化学株式会社试剂。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 s表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时各受试 物剂量组大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平与高脂对照组之间的差异, PO.05判断为差 异具有显著性。
2. 结果
2.1本发明中药组合物 I口服液复合粉调节血脂实验大鼠体重
本发明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组大鼠体重与高脂饲料对照组比较无明 显差异, 见表 1。
表 l . 本发明中药组合物 I口服液复合粉调节血脂实验大鼠体重 (g, x+s ) 组别 n 0周 1周 2周 3周 4周 基础饲料对照组 10 178.6±7.4 234.7±12.9 285.7±18.7 326.6±19.7 373.3±22.4 高脂饲料对照组 10 176.9±5.5 230.2士 9.2 278.9±14.7 330.3±18+2 381.3±20.8
0+ 175g/kgbw组 10 174.8±6.2 234.8士 9.5 286.5±14.6 326.3±12.3 376.9±14.1
0.350g/kgbw组 10 177.316.7 235.0± 6.3 283.6±11.7 322.6±15.6 364.2122.4
1.050g/kgbw组 10 176.1±7.8 232.0±12.3 286.4±14.1 322.0±19.7 366.1127.2
2.2本发明中药组合物 I口服液复合粉对大鼠血脂的影响
2.2.1 实验开始时, 各组大鼠血清 TC、 TG、 HDL-C水平无明显差异, 见表 2。
实验开始时大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平 (mmol/L, X+S )
动物数
组 另 J TC TG HDL-C
(只)
基础饲料对照组 10 2. 59±0. 30 1. 29±0. 34 1. 04±0. 12
高脂饲料对照组 10 2. 58±0. 31 1. 27±0. 34 1. 08±0. 08
0. 1 75 g/kgbw 组 10 2. 59±0. 27 1. 21±0. 37 1. 07±0. 07
0.3 50g/kgbw 组 10 2. 61±0. 38 1. 21士 0· 34 1. 08士 0. 13
1 .050g/kgbw 组 10 2. 58±0. 25 1. 22士 0· 33 1. 05±0. 08
2.2.2实验结束时, 高脂饲料对照组大鼠血清 TC和 TG水平显著高于基础饲料对照组, 表明高脂模型的成功建立; 本发明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组大鼠血清 TC水 平低于高脂饲料对照组, 差异具有显著性 (P<0.05 ); 本发明中药组合物 I口服液复合 粉中、 高剂量组大鼠血清 TG低于高脂饲料对照组, 差异具有显著性 (P<0.05 ) ; 本发 明中药组合物 I口服液复合粉各剂量组大鼠血清 HDL-C水平与高脂词料对照组相比, 差异无显著性, 见表 3。
表 3. 本发明中药组合物 I口服液复合粉对大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平的影响
( mmol/L, X±S )
动物数
组 别 TC TG HDL-C
(只)
基础伺料对照组 10 2. 61±0. 25* 1. 30±0. 29* 1. 05±0. 12
高脂饲料对照组 10 3. 72±0. 48 1. 78士 0· 25 1. 09士 0. 08
0. 175g/kgbw 组 10 3. 17±0. 63* 1. 68±0. 25 1. 11±0. 07
0.350g/kgbw 组 10 3. 19±0. 59* 1. 42±0. 32* 1. 08±0. 12
1 .050g/kgbw 组 10 3. 25±0. 58* 1. 27±0. 30* 1. 11±0. 14
* 表示与高脂饲料对照组相比有显著性差异 (P<0.05)
3. 结论:
根据本发明中药组合物 I口服液复合粉人群推荐日摄入量 2.10g/60kg体重扩大 5、 10和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 0.175g、 0.350、 1.050g/kg体重, 另设基础饲 料对照组、 高脂饲料对照组。 采用清洁级健康雄性 SD大鼠连续灌胃给予受试物, 30天 后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研究表 明: 本发明中药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组大鼠血清总胆固醇(TC) 以及 中、 高剂量组血清甘油三酯 (TG) 明显低于高脂伺料对照组, 根据中华人民共和国卫 生部《保健食品检验与评价技术规范 (2003 )》 中辅助降血脂功能的结果判定标准, 认 为本发明中药组合物 I口服液复合粉具有辅助降血脂功能。
四、 本发明所述中药组合物 II (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花) 口服液经 动物试验证明, 具有降血脂作用, 且无毒副作用, 其详细说明如下- 1+材料与方法
1.1 样品来源及处理: 受试药为中药组合物 Π口服液复合粉(西洋参、 灵芝、 发酵虫草 菌粉、玫瑰花)由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg复合粉干粉 相当于总生药材 12.56g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。 中药组合物 I复合粉(西洋 参、 灵芝、 发酵虫草菌粉) 由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg 复合粉干粉相当于总生药材 11.41g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性 SD大鼠, 体重 150-200g, 由江西中医学院实验 动物中心提供, SCXK (赣) 2006-0001。 动物词养于江西中医学院动物室, 环境许可 证: SYXK(赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1动物分组: 雄性 SD大鼠 60只, 体重 150-200g, 基础饲料适应性喂养一周后, 取尾 血, 测定血清总胆固醇 (TC)、 甘油三酯 (TG) 和高密度脂蛋白胆固醇 (HDL-C)。 根 据 TC水平和体重将大鼠分为 6组, 每组 10只。 设基础饲料对照组、高脂饲料对照组、 受试药低、 中、 高三个剂量组及中药组合物 I对照组。
1.3.2剂量设置: 中药组合物 II口服液复合粉每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重,
120g总生药材配制成 1000ml 中药组合物 II口服液, lg 复合粉干粉相当于总生药材
12.56g, 换算得到中药组合物 II口服液复合粉每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体 重。 由此推算出大鼠每日摄入量为: 低剂量组为 1.2g生药 /kg体重, 中剂量组为 2.4g生 药 /kg体重; 高剂量组为 7.2g生药 /kg体重,分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 中药组合物 I复合粉每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml中药组合物 II口服液, lg中药组合物 I复合粉干粉相当于总生药材 11.41g, 中 药组合物 I组给予中剂量 2.4g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍) .实验开始 后,除基础饲料对照组喂饲基础饲料外,其余各组大鼠均喂饲高脂饲料(高脂饲料组分: 78.8%基础饲料, 1%胆固醇, 10%蛋黄粉, 10%猪油, 0.2%胆盐)。 将受试物样品以蒸馏 水配制成相应浓度 (0.0095g干粉 /ml、 0.0190g干粉 /ml、 0.0597g干粉 /ml ) 的灌胃液进 行实验, 灌胃量为 lml/lOOg体重, 受试物组每日分别给予 3个剂量的中药组合物 II口服 液复合粉灌胃液, 将中药组合物 I以蒸馏水配制成 0.0190g干粉 /ml浓度的灌胃液进行 实验, 灌胃量为 lml/lOOg体重, 基础饲料对照组、 高脂饲料对照组给予等体积蒸馏水灌 胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。 每周称体重。 各组动物自由进食、 饮水。 30天后, 股 动脉取血, 分离血清检测相关指标。
1.3.3 检验指标: TC (酶法)、 TG (酶法)、 HDL-C (直接法), Beckman-CX7全自动血 液生化仪, 试剂购用南京建成。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 s表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时各受试 物剂量组大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平与高脂对照组之间的差异, PO.05判断为差 异具有显著性, P<0.01判断为差异具有极显著性。
2. 结果
2.1 中药组合物 II口服液复合粉对实验大鼠体重的影响
中药组合物 II口服液复合粉各剂量组大鼠及中药组合物 I组大鼠体重与高脂饲料 对照组比较无明显差异, 中药组合物 II口服液复合粉各剂量组大鼠与中药组合物 I对照 组大鼠体重比较无明显差异, 见表 1。
表 1. 中药组合物 Π口服液复合粉对实验大鼠体重的影响 (g, x±s) 组别 , ^ ^ 、 n 0周 1周 2周 3周 4周
(g生药 kgbw)
基础词料对照组 0.0 10 175.3±10.2 225.9±15.6 276.2±19.2 330.6±29.4 380.5 32.4 高脂词料对照组 0·0 10 173.9±8.6 231.1± 12.3 268.1±20.1 321.2±28.2 372.6 30.4
中药组合物 I组 2.4 10 179.9±8.9 226.8±12.7 268.9±19.4 334.3±28.2 383.9±30.5 受试药低剂量组 L2 10 177.8±9.5 224.5±12.5 276.3±18.4 336.5±22.3 386.6±24.1 受试药中剂量组 14 10 180.6±10.7 225.1± 11.4 273.2±18.7 329.0±25.6 369.8±22.6 受试药高剂量组 7.2 10 179.4 10.8 230.2 15.6 276.4±20.2 332.6±29.5 372.5 27.8
2.2 中药组合物 II口服液复合粉对大鼠血脂的影响
实验开始时, 各组大鼠血清 TC、 TG、 HDL-C水平无明显差异, 见表 2。 实验结束 时, 高脂词料对照组大鼠血清 TC和 TG水平显著高于基础饲料对照组, 表明高脂模型 的成功建立; 中药组合物 II口服液复合粉各剂量组及中药组合物 I组大鼠血清 TC水平 低于高脂饲料对照组, 差异具有显著性 (P<0.05 ); 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组及中药组合物 I组大鼠血清 TG低于高脂饲料对照组, 差异具有显著性 (P<0.05 ); 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组及中药组合物 I组大鼠血清 HDL-C 水平与高脂饲料对照组相比, 差异无显著性。 中药组合物 II口服液复合粉中、 高剂量组大鼠血清 TC水平低于中药组合物 I对照组, 差异具有显著性(PO.05 ); 中药 组合物 II口服液复合粉中、 高剂量组大鼠血清 TG低于中药组合物 I对照组, 差异具有 显著性(P<0.05 ); 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组大鼠血清 HDL-C水平 与中药组合物 I对照组相比, 差异无显著性。 结果见表 3。
实验开始时大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平 (mmol/L, X+S )
剂量 动物数
组别 ( 生药/ kgbw) TC TG HDL-C
(只)
基础饲料对照组 0.0 10 2. 66±0. 36 1. 39±0. 33 1. 16±0. 12 高脂饲料对照组 0.0 10 2. 68士 0. 38 1. 37±0. 30 1. 18±0. 14 中药组合物 I组 2.4 10 2. 68士 0. 32 1. 37±0. 34 1. 19±0. 18 受试药低剂量组 1.2 10 2. 69士 0. 37 1. 33±0. 32 1. 17±0. 17 受试药中剂量组 2.4 10 2. 71士 0. 28 1. 31±0. 38 1. 18±0. 20 受试药高剂量组 7.2 10 2. 64±0. 35 1. 32±0. 35 1. 15±0. 16
表 3.中药组合物 II口服液复合粉对大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平的影响
( mmol/L, X±S)
剂量 动物数
组别 (g生药/ kgbw) TC TG HDL-C
(只)
基础饲料对照组 0.0 10 2. 72±0. 28* 1. 41±0. 25* 1. 16±0. 16 高脂词料对照组 0.0 10 3. 86±0. 33 1. 87±0. 29 1. 19±0. 18 中药组合物 I组 2.4 10 3. 27±0. 43* 1. 48±0. 22* 1. 16±0. 16 受试药低剂量组 1.2 10 3. 19±0. 39* 1. 42±0. 32* 1. 21±0. 17 受试药中剂量组 2.4 10 2. 55±0. 28*A 1. 12±0. 30*A 1. 18±0. 20 受试药高剂量组 7.2 10 2. 25±0. 26*A 0. 92±0. 20*A 1. 21±0. 24 与高脂饲料对照组相比, * P<0.05, ** P<0.05, 与中药组合物 I组相比, A Ρ<0.05,
"尸<0 01。
3. 结论:
根据中药组合物 II口服液复合粉人群推荐日摄入量 24g生药 /60kg体重扩大 5、 10 和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 1.2g生药、 2.4g生药、 7.2g生药 /kg体重, 另设 基础饲料对照组、高脂饲料对照组。采用清洁级健康雄性 SD大鼠连续灌胃给予受试物, 30天后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研 宄表明: 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、高剂量组大鼠血清总胆固醇(TC) 以及血 清甘油三酯 (TG) 明显低于高脂饲料对照组。 中药组合物 II口服液复合粉中、 高剂量 组大鼠血清总胆固醇 (TC) 以及血清甘油三酯 (TG) 明显低于中药组合物 I对照组, 认为中药组合物 II口服液复合粉具有辅助降血脂功能,且其降血脂功能优于中药组合物 I组。
五、 本发明中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉)经动物试验证明, 具有 提高小鼠具有抗氧化功能, 且无毒副作用, 动物实验报告说明如下-
1. 材料与方法
1.1 样品来源及处理: 中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉) 复合粉由江中药 业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。
1.2 实验动物及环境: 清洁级健康雄性 ICR小鼠, 体重 18-22g, 由北京大学 (医学部) 实验动物中心提供(动物合格证号: 医动字 SCXK (京) -2006-0008)。 清洁级动物房饲 养(动物实验环境设施(SPF)合格证书: 医动字第 01-2055), 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3实验方法
1.3.1 动物分组: 雄性 ICR小鼠 50只, 根据体重随机分为 5组, 设立空白对照组、模型 对照组、 中药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组, 每组 10只。
1.3.2剂量设计: 中药组合物 I口服液每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g 总生药材配制成 1000ml中药组合物 I口服液, lg中药组合物 I口服液复合粉干粉相当 于总生药材 11.41g, 换算得到中药组合物 I 口服液复合粉每人每日推荐摄入量为- 2.10g/60kg体重。由此推算出小鼠每日摄入量为:低剂量组, 0.175g/kg体重; 中剂量组, 0.350g/kg体重: 高剂量组, 1.050g/kg体重,分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度 (0.0175g/ml、 0.0350g/mK 0.1050g/ml ) 的灌胃液进行 实验, 小鼠灌胃量按 0.1ml/10g体重计算, 受试物组每日分别给予 3个剂量的中药组合 物 II口服液复合粉灌胃液, 空白对照组和模型对照组给予等体积蒸馏水灌胃,每日灌胃 1次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以普通饲料, 自由进食、 饮水。 30天后, 取血检测血 清中超氧化物歧化酶 (SOD)、 谷胱甘肽过氧化物酶 (GSH-Px) 活力和丙二醛 (MDA) 含量。 此后, 除空白对照组外, 各组给予 6Gy6QCoY射线全身 1次性照射, 照射后第 4 天处死各组动物,取肝组织检测超氧化物歧化酶( SOD )、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px) 活力和丙二醛 (MDA) 含量。
1.3.3检验指标:严格按照南京建成生物工程研究所试剂盒说明书测定血清和肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA含量。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 表示, 采用单因素方差分析, 比较辐照前各受试物 剂量组血清 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与空白对照组之间的差异; 比较辐照后各 受试物剂量组肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与模型对照组之间的差异, P<0.05判断为差异具有显著性。
2结果
2.1动物体重增长情况:
中药组合物 I口服液复合粉各剂量组小鼠体重与空白对照组比较差异无显著性。见 表 1。
表 1 中药组合物 I口服液复合粉对小鼠体重增长的影响 (g, i+s) 剂量 动物数
组别 初始体重 终末体重
(g/kgbw) (只)
空白对照组 0.000 10 18. 63 ± 1· 67 31. 75 ± 3· 20 模型对照组 0.000 10 18. 52 ± 1· 45 31. 66 ± 3· 43 低剂量组 0.175 10 18. 51 ± 1· 36 32. 19 ± 2· 14 中剂量组 0.350 10 18. 80 ± 1· 40 30. 44 ± 2. 46 高剂量组 1.050 10 18. 43 ± 1· 51 29. 20 ± 2. 78
2.2中药组合物 I口服液复合粉对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
各剂量组小鼠血清 GSH-Px活力与空白对照组相比差异无显著性; 低、 中、 高剂量 组血清 SOD活力均显著高于空白对照组 (P<0.05 ) ; 中、 高剂量组血清 MDA含量显著 低于空白对照组 (P<0.05)。 见表 2。
表 2.中药组合物 I 口服液复合粉对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响 ( 士 S )
剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g/kgbw) (只) (EU) (U/ml ) (nmol/ml) 空白对照组 0.000 10 707.31±295.12 130. 15± 8. 24 11. 54士 1· 20 低剂量组 0.175 10 816.35±172.10 154. 91± 8. 23* 10. 33±1. 34 中剂量组 0.350 10 847.12±183.03 142. 60± 9. 58* 9. 50±1. 55* 高剂量组 1.050 10 822.50±145.66 141. 69±12.70* 9. 22±1. 91*
* 表示与空白对照组相比有显著性差异 (Ρ<0.05 )
2.3中药组合物 I口服液复合粉对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
模型对照组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均显著低于空白对照组, MDA含量显著 高于空白对照组, 表明辐照模型的成功建立。 中药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂 量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均显著高于模型对照组(P<0.05 ) ; 中、高剂量组小鼠 肝脏 MDA含量均显著低于模型对照组 (P<0.05 )。 见表 3。
表 3.中药组合物 I 口服液复合粉对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD, MDA水平的影响 ( 土 S ) 剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g/kgbw) (只) (EU/ mgprot) (U/mgprot) (nmol/mgprot) 空白对照组 0+000 10 864+60士 68.03 * 140. 63±18. 52* ϋ. 82±ϋ. 18* 模型对照组 0.000 10 442+75士148.35 103. 76士 11. 05 1. 37士 0· 15 低剂量组 0.175 10 620.60±176.16* 127. 66±19. 17* 1. 24±0. 22 中剂量组 0 350 10 663 32±194.07* 123. 89士15. 47* 1. 17±0. 17* 高剂量组 1.050 10 708.30±231.69* 127. 38±14. 19* 1. 15±0. 17*
* 表示与模型对照组相比有显著性差异 (Ρ<0.05 )
3. 结论:
根据中药组合物 I口服液复合粉人群推荐日摄入量 2.10g/60kg体重扩大 5、 10和 30 倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 0.175g、 0.350、 1.050g/kg体重, 另设空白对照组、 模型对照组。 采用清洁级健康雄性 ICR小鼠连续灌胃给予受试物, 30天后进行检测相 关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研究表明: 中药组合 物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组均可提高小鼠血清 SOD活力, 中、 高剂量组均可 降低小鼠血清中 MDA含量。 中药组合物 I口服液复合粉低、 中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px, SOD活力均显著高于经 6Gy6QCoY射线全身 1次性照射的模型对照组, 中、 高 剂量组小鼠肝脏 MDA含量均显著低于模型对照组, 根据中华人民共和国卫生部《保健
食品检验与评价技术规范 (2003 )》 中抗氧化功能的结果判定标准, 认为中药组合物 I 口服液复合粉具有抗氧化功能。
六、 本发明中药组合物 II口服液复合粉(西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花) 经动物试验证明, 具有增强人体抗氧化功能, 且无毒副作用, 动物实验报告说明如下- 1. 材料与方法
1.1 样品来源及处理: 受试药为中药组合物 II口服液复合粉 (西洋参、 灵芝、 发酵虫草 菌粉、玫瑰花)由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg复合粉干粉 相当于总生药材 12.56g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。 中药组合物 I复合粉(西洋 参、 灵芝、 发酵虫草菌粉) 由江中药业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg 复合粉干粉相当于总生药材 11.41g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动 物中心提供,许可证号: SCXK (赣) 2006— 0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环境 许可证: SYXK (赣 )2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1 动物分组: 小鼠 60只, 根据体重随机分为 6组, 设立空白对照组、 模型对照组、 中药组合物 I组、 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组, 每组 10只。
1.3.2剂量设计: 中药组合物 II口服液复合粉每人每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml 中药组合物 II口服液, lg 复合粉干粉相当于总生药材 12.56g, 换算得到中药组合物 II口服液复合粉每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体 重。 由此推算出小鼠每日摄入量为: 低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生 药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度(0.0159g干粉 /ml、 0.0318g干粉 /ml、 0.0995g干粉 /ml) 的灌胃液进行实验, 小鼠灌胃量按 O. lml/lOg体重计算。 中药组合物 I复合粉每人每日 推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml中药组合物 II口服液, lg中药组合物 I复合粉干粉相当于总生药材 11.41g, 中药组合物 I组给予中剂量 4.0g 生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0350g干粉 /ml 灌胃液进行实验, 灌胃量按 O. lml/lOg体重计算。 空白对照组和模型对照组给予等体积 蒸馏水灌胃。 每日灌胃 1次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以普通饲料, 自由进食、 饮水。 30天后, 取血检测血清中超氧化物歧化酶(SOD:)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活 力和丙二醛 (MDA)含量。 此后, 除空白对照组外, 各组给予 6Gy6()Cc^射线全身 1次
性照射, 照射后第 4天处死各组动物, 取肝组织检测超氧化物歧化酶 (SOD)、 谷胱甘 肽过氧化物酶 (GSH-Px) 活力和丙二醛 (MDA)含量。
1.3.3检验指标:严格按照南京建成生物工程研究所试剂盒说明书测定血清和肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA含量。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 表示, 采用单因素方差分析, 比较辐照前各受试物 剂量组血清 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与空白对照组之间的差异; 比较辐照后各 受试物剂量组肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与模型对照组、 原方组之间 的差异, P<0.05判断为差异具有显著性。
2结果
2.1动物体重增长情况:
中药组合物 II口服液复合粉各剂量组小鼠体重与空白对照组、中药组合物 I组比较 差异无显著性。 见表 1。
表 1 中药组合物 II口服液复合粉对小鼠体重增长的影响 (g, ^ts)
剂 J 动物数
组别 初始体重 终末体重
(g生药 /kgbw) (只)
空白对照组 0+0 10 19.70士1.34 32.90±2.13 模型对照组 0.0 10 20.20士1.32 32.80±2.30 中药组合物 I组 4+0 10 19.70±1.36 33.00±2.54 受试药低剂量组 2.0 10 20.00±1.49 33.50±2.22 受试药中剂量组 4+0 10 19.80士1.54 33.90±2.38 受试药高剂量组 12.0 10 19.88±1.48 33.60±2.73
2.2中药组合物 II口服液复合粉对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
与空白对照组相比较, 中药组合物 II口服液复合粉各剂量组、 中药组合物 I组小鼠 血清 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高(P<0.05, P<0.01 ), 同时血清 MDA含量显著降 低(P<0.05, P<0.01 ) o与中药组合物 I组比较, 中药组合物 II口服液复合粉各剂量组中、 高剂量组小鼠血清 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高(P<0.05, P<0.01 ), 同时血清 MDA 表 2.中药组合物 II口服液复合粉对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响 ( 土 S ) 剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g/kgbw) (只) (EU) (U/ml ) (nmol/ml) 空白对照组 0.0 10 612.00±145.54 111.00±11.76 10. 37±1.38 模型对照组 0.0 10 613.90士 105.36 110.10±15.56 10.58±1.16 中药组合物 I组 4.0 10 757.20±143.31 * 125.60±11.56:|: 9.42±1.04*
受试药低剂量组 2.0 10 766.60±123.12** 130.10±11.78** 9.17±1.18** 受试药中剂量组 4.0 10 899.10±119.27**A 137.90±13.63**A 8.37±0.83** 受试药高剂量组 12.0 10 952.30±119.98**AA 144.00±12.99**AA 8.09±0.79** 与模型对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与中药组合物 I组比较, AP<0.05, "P<0+05。
2.3中药组合物 II口服液复合粉对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
与空白对照组相比较, 模型对照组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD 活力均显著降低 (P<0.01 ), MDA含量显著升高 (P<0.01 ), 表明辐照模型的成功建立。 与模型对照组 比较,中药组合物 II口服液复合粉低、中、高剂量组及中药组合物 I组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均显著升高 (P<0.01 ), 同时中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组及 中药组合物 I组小鼠肝脏 MDA含量均显著降低(P<0.01 )。与中药组合物 I组比较, 中 药组合物 II口服液复合粉各剂量组中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均有明显 升高 (P<0.05, P<0.01 ), 同时肝脏 MDA含量显著降低 (P<0.05, P<0.01 )。 见表 3。
表 3.中药组合物 II口服液复合粉对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD、 MDA水平的影响 ( 士 S)
剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g/kgbw) (只) (EU/ mgprot ) (U/mgprot) (nmol/mgprot) 空白对照组 0.0 10 863.60±102.09** 148.40±14.71 ** 0.85±0.12** 模型对照组 0.0 10 464.20±101.98 103.10±13.30 1.38士0.11 中药组合物 I组 4.0 10 617.00士 100.17** 126.70±15.95** 1.17士 0.13** 受试药低剂量组 2.0 10 629.60±111.15** 131.80±16.65** 1.16±0.20** 受试药中剂量组 4.0 10 734.10±121.64**A 144.10±17.03**Α 0.95±0.14**AA 受试药高剂量组 12.0 10 815.70±90.72**AA 150.60±17.24**ΑΑ 0.86±0.14**AA 与模型对照组比较, *p<0.05 , **P<0.01 ; 与中药组合物 I组比较, AP<0+05,, "P<0.05。。
3. 结论:
根据中药组合物 II口服液复合粉人群推荐日摄入量 24.0g生 /60kg体重扩大 5、 10 和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, S卩 2.0g生药、 4.0g生药、 12.0g生药 /kg体重, 另 设空白对照组、 模型对照组和中药组合物 I组 (12.0g生药 /kg体重)。 采用清洁级健康雄 性昆明种小鼠连续灌胃给予受试物, 30天后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05, P<0.01判断为差异具有显著性和极显著性。经动物实验研究表明: 中药组合物 II口服液 复合粉低、 中、 高剂量组均可提高小鼠血清 GSH-Px、 SOD活力, 均可降低小鼠血清中 MDA含量。 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活 力均显著高于经 6Gy6QCoY射线全身 1 次性照射的模型对照组, 且各剂量组小鼠肝脏 MDA含量均显著低于模型对照组。 中药组合物 II口服液复合粉中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px, SOD活力均显著高于中药组合物 I对照组, 且中、 高剂量组小鼠肝脏 MDA
含量均显著低于中药组合物 I对照组。根据中华人民共和国卫生部《保健食品检验与评 价技术规范 (2003)》 中抗氧化功能的结果判定标准, 认为中药组合物 II口服液复合粉 具有抗氧化功能, 且抗氧化效果优于中药组合物 I 。
七、 本发明中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉)经动物试验证明, 具有 提高小鼠缺氧耐受力功能, 且无毒副作用, 动物实验报告说明如下:
1 材料和方法
1.1 样品:
由江中药业股份有限公司提供的本发明中药组合物 I (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌 粉) 口服液, 为棕黄色或棕褐色粉末。 长期常温保存, 供实验用。 公司提供本发明中药 组合物 I口服液配方为:西洋参 15g、灵芝 20g、发酵虫草菌粉 10g及辅料 75g,共 120g。 本发明中药组合物 I口服液的推荐剂量为成人 (按 60kg体重计) 每日 24g, 相当于 0.4g/d/kg体重。 其中, 西洋参占 12.5%, 灵芝占 16.7%, 虫草占 8.3%。
1.2实验动物:
由中国医学科学院实验动物中心提供的 Balb/c 健康雄性小鼠 (合格证号: SCXK (京) 2005-0013 ) 6〜8周龄, 18〜22g, 共 120只, 分为三批进行实验, 每批随机分 为 4组, 每组 10只。 实验一批进行常压耐缺氧实验; 实验二批进行亚硝酸钠中度存活 实验; 实验三批进行急性脑缺血性缺氧实验。实验动物词养于北京大学医学部实验动物 中心二级动物室。
1.3 分组- 实验设本发明中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组以及空白对照组, 分别为本发 明中药组合物 I口服液人体推荐量的 3.3倍、 10倍、 30倍, 即 4.5g/kg/d、 1.5g/kg/d、 0.5g/kg/d。 受试物用水(已消毒)配制, 每日一次经口给予, 每周称量体重调整灌胃量, 连续灌胃 45天后测各项免疫指标。 小鼠灌胃体积为 O.lmL/lOg鼠重。 同时设一空白对 照组 (0g/kg/d), 用水 (已消毒)代替受试物, 每日灌胃体积与各受试物组相同。 实验 期间动物自由进食、 饮水。
1.4主要仪器与试剂-
250mL磨口瓶、 秒表、 lmL注射器、 剪刀。
凡士林、 钠石灰、 亚硝酸钠。
1.5 实验方法:
1.5.1 常压耐缺氧实验 灌胃 45天后,于末次灌胃后 1小时,将各组小鼠分别放入盛有 5g钠石灰的 250mL 磨口瓶内 (每瓶 1只) , 用凡士林封瓶口, 盖严, 使之不漏气, 立即计时, 以呼吸停止 为指标, 观察小鼠因缺氧而死亡的时间。 受试样品组与对照组比较, 存活时间延长, 并 具有统计学意义, 则判定该实验结果阳性。
1.5.2亚硝酸钠中度存活实验
于末次灌胃后 1小时, 各组小鼠按 200— 240mg/kgBW剂量腹腔注射亚硝酸钠 (注射 量为 0.1mL/10g), 立即计时, 记录动物存活时间。 受试样品组与对照组比较, 存活时间延 长, 并具有统计学意义, 则判定该实验结果阳性。
1.5.3 急性脑缺血性缺氧实验 于末次灌胃后 1小时, 各组动物 (在乙醚浅麻醉下:)自颈部逐只断头, 立即按秒表记 录小鼠断头后至张口喘气停止时间。 受试样品组与对照组比较, 喘气时间延长, 并具有 统计学意义, 则判定该实验结果阳性。
1.6 统计方法
所有结果以均数土标准差表示, 采用 SPSS16.0软件进行单因素方差分析, 比较各实验 组与对照组的差异。 但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验, 方差齐, 计算 F值, F fl<Fo.05, 结论: 各组均数间差异无显著性; F值 FQ.Q5, P 0.05, 用多个实验组和一个对 照组间均数的两两比较方法进行统计; 对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换, 待满足正态或方差齐要求后, 用转换后的数据进行统计; 若变量转换后仍未达到正态或方 差齐的目的, 改用秩和检验进行统计。
1.7结果判定依据
《保健食品检验与评价技术规范》 (2003 版) 规定: 常压耐缺氧实验、 亚硝酸钠中毒 存活实验、 急性脑缺血性缺氧实验三项实验中任二项实验结果阳性, 可判定该受试样品具 有提高缺氧耐受力功能作用。
2结果
2.1 本发明中药组合物 I口服液高、 中、 低剂量组及对照组小鼠常压耐缺氧时间的影响 表 1本发明中药组合物 I口服液对小鼠常压耐缺氧时间的影响 (x± SD)
组别 动物数 常压耐缺氧时间 (s)
(只)
对照 10 2263.20 + 218.29
低 10 2925.14 + 390.46*
中 10 2513.11±341.34
高 10 3054.17±485.74*
*: 与对照组比较有显著性差异, P<0.05
由表 1可见, 经口给予小鼠受试物 45天后, 本发明中药组合物 I口服液剂量组与 空白对照组比较, 低、 高剂量组能显著延长小鼠常压耐缺氧时间 (P<0.05)。
2.2本发明中药组合物 I口服液高、 中、 低剂量组及对照组小鼠亚硝酸钠中度存活时间 的影响
表 2受试物对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响 (x±SD) 组别 动物数 亚硝酸钠巾度存活时间 (s)
(只)
对照 10 993.79± 156.23
低 10 1115.94±183 + 52
中 10 1069.39±282.58
1¾ 10 1279.33 + 349.79*
*: 与对照组比较有显著性差异, P<0.05;
由表 2可见, 经口给予小鼠受试物 45天后, 本发明中药组合物 I口服液剂量组组 与空白对照组比较,高剂量组对小鼠亚硝酸钠中度后存活时间有显著性提高(P<0.05), 即本发明中药组合物 I口服液在剂量 4.5g/kg/d组能增强小鼠亚硝酸钠中度后存活能力。 2.3 本发明中药组合物 I口服液高、 中、 低剂量组及对照组小鼠急性脑缺血性缺氧存活 时间的影响
表 3 本发明中药组合物 I口服液对小鼠脑缺血性缺氧存活时间的影响 (x±SD) 组别 动物数 (只) 小鼠脑缺血性缺氧存活吋间
对照 10 19.42±3.33
低 10 21.19+1.63
中 10 22.10±3.07
1¾ 10 22+31 ±1+98*
*: 与 0组比较有显著性差异, P<0.05
由表 3可见, 经口给予小鼠不同剂量的中药组合物 I口服液 45天后, 三个剂量组 与对照组比较, 高剂量组可显著延长小鼠急性脑缺血性缺氧的存活时间 (P < 0.05), 即 本发明中药组合物 I口服液在 4.5g/kg/d能提高小鼠急性耐缺氧时间。
3 - 小结
经口给予小鼠不同剂量的本发明中药组合物 I口服液 45天后,与空白对照组比较, 该受试物 4.5g/kg/d组对小鼠常压耐缺氧时间、 亚硝酸钠中度存活时间和脑缺血性缺氧 存活时间均有显著提高; 0.5g/kgBW组对小鼠常压耐缺氧时间有显著提高。
根据中华人民共和国卫生部《保健食品检验与评价技术规范 (2003 )》 中缓解体力 疲劳功能的结果判定标准, 上述功效试验, 本发明中药组合物 I口服液具有提高缺氧耐 受力的保健功能。
八、 本发明中药组合物 II复合粉(西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花)经动物 试验证明, 具有提高小鼠缺氧耐受力功能, 且无毒副作用, 动物实验报告说明如下- 1 材料和方法
I .1 样品:
受试药为中药组合物 II复合粉(西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花) 由江中药 业股份有限公司提供, 样品为棕色固体粉末状, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.56g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。中药组合物 I复合粉(西洋参、灵芝、发酵虫草菌粉) 由江中药业股份有限公司提供,样品为棕色固体粉末状, lg复合粉干粉相当于总生药材
I I .41g, 临用前用蒸馏水配制成所需浓度。
1.2实验动物:
清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动物中心提供,许可 证号: SCXK (赣) 2006— 0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环境许可 证: SYXK(赣;) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3. 1动物分组: 小鼠共 150只, 分为三批进行实验, 每批随机分为 5组, 每组 10只。 实验一批进行常压耐缺氧实验; 实验二批进行亚硝酸钠中度存活实验; 实验三批进行急 性脑缺血性缺氧实验。
1.3.2剂量设计: 中药组合物 II复合粉 (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花)每人 每日推荐摄入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml中药组合物 II口服 液, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.56g, 换算得到中药组合物 II复合粉(西洋参、灵
芝、 发酵虫草菌粉、玫瑰花)每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重。 由此推算出 小鼠每日摄入量为: 低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂 量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸馏水 配制成相应浓度 (0.0159g干粉 /ml、 0.0318g干粉 /ml、 0.0995g干粉 /ml) 的灌胃液进行 实验, 小鼠灌胃量按 O. lml/lOg体重计算。 中药组合物 I复合粉复合粉每人每日推荐摄 入量为: 200ml/60kg体重, 120g总生药材配制成 1000ml中药组合物 I口服液, lg中药 组合物 I复合粉干粉相当于总生药材 11.41g,中药组合物 I复合粉给予中剂量 4.0g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0350g干粉 /ml灌胃 液进行实验, 灌胃量按 O. lml/lOg体重计算。 每日一次经口给予, 每周称量体重调整灌 胃量, 连续灌胃 45天后测各项指标, 同时设一空白对照组, 每日灌胃体积与各受试物 组相同蒸馏水。 实验期间动物自由进食、 饮水。
1.3.3 常压耐缺氧实验
灌胃 45天后, 于末次灌胃后 1小时, 将各组小鼠分别放入盛有 5g钠石灰的 250mL磨 口瓶内 (每瓶 1 只), 用凡士林封瓶口, 盖严, 使之不漏气, 立即计时, 以呼吸停止为 指标, 观察小鼠因缺氧而死亡的时间。
1.3.4亚硝酸钠中度存活实验
于末次灌胃后 1 小时, 各组小鼠按 240mg/kgBW 腹腔注射亚硝酸钠 (注射量为 0.1mL/10g), 立即计时, 记录动物存活时间。
1.3.5 急性脑缺血性缺氧实验
于末次灌胃后 1小时, 各组动物 (在乙醚浅麻醉下;)自颈部逐只断头, 立即按秒表记录小 鼠断头后至张口喘气停止时间。
1.4主要仪器与试剂: 250mL磨口瓶、 秒表、 lmL注射器、 剪刀。 凡士林、 钠石灰、 亚 硝酸钠。
1.5 统计方法
所有结果以均数士标准差表示, 采用 SPSS15.0软件进行单因素方差分析, 比较各实验 组与对照组的差异。 但需按方差分析的程序先进行方差齐性检验, 方差齐, 计算 F值, F fl<Fo.o5 , 结论: 各组均数间差异无显著性; F值 55F。5, PSS0.05 , 用多个实验组和一个对 照组间均数的两两比较方法进行统计; 对非正态或方差不齐的数据进行适当的变量转换, 待满足正态或方差齐要求后, 用转换后的数据进行统计; 若变量转换后仍未达到正态或方 差齐的目的, 改用秩和检验进行统计。
1.6结果判定依据
常压耐缺氧实验、 亚硝酸钠中毒存活实验、 急性脑缺血性缺氧实验三项实验中任二项 实验结果阳性, 可判定该受试样品具有提高缺氧耐受力功能作用。
2结果
2.1 中药组合物 II (西洋参、 灵芝、 发酵虫草菌粉、 玫瑰花) 口服液对小鼠常压耐缺氧 时间的影响
中药组合物 II口服液低、 中、 高剂量组小鼠与中药组合物 I小鼠常压耐缺氧时间均 明显长于空白对照组(P<0.05, P<0.01 ), 中药组合物 II口服液中、 高剂量组小鼠常压 耐缺氧时间均明显长于中药组合物 I对照组 (P<0.05)。 结果见表 1。
表 1中药组合物 Π口服液对小鼠常压耐缺氧时间的影响 ( s)
动物数
组别 常压耐缺氧时间 (s)
(g生药 /kgbw) (只)
空白对照组 0.0 10 2287.70 ±203.579 中药组合物 I组 4.0 10 2567.90± 191.127** 受试药低剂量组 2.0 10 2510.80 ±226.28* 受试药中剂量组 4.0 10 2820.40±265.19**A 受试药高剂量组 12.0 10 2937.70±269.90**A 与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与中药组合物 I组比较, AP<0.05„
2.2中药组合物 II口服液对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响
中药组合物 II口服液中、高剂量组小鼠亚硝酸钠中度存活时间均明显长于空白对照 组 (ρ<ο.οι ), 中药组合物 Π口服液中、 高剂量组小鼠亚硝酸钠中度存活时间均明显长 于中药组合物 I对照组 (P<0.05 )。 结果见表 2。
表 2 中药组合物 II口服液对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响 ( S)
动物数 (只) 亚硝酸钠中度存活时间 (s) 空白对照组 0+0 10 950.50 ± 125.98
中药组合物 I组 4+0 10 1047+70± 152.28
受试药低剂量组 2.0 10 982+00± 131.83
受试药中剂量组 4+0 10 1177.20± 150.04**A 受试药高剂量组 12.0 10 1179.70± 139.79**A 与空白对照组比较, **P<0.01 ; 与中药组合物 I比较, AP<0.05 C
2.3中药组合物 II口服液对小鼠急性脑缺血性缺氧存活时间的影响
中药组合物 II口服液中、高剂量组和中药组合物 I组小鼠脑缺血性缺氧存活时间均 明显长于空白对照组(P<0.05, P<0.01 ), 中药组合物 II口服液中、 高剂量组小鼠脑缺 血性缺氧存活时间均明显长于中药组合物 I对照组 (P<0.05 )。 结果见表 3。
表 3 中药组合物 II口服液对小鼠脑缺血性缺氧存活时间的影响 (
动物数(只) 小鼠脑缺血性缺氧存活时间
(g生药 /kgbw)
(s)
空白对照组 0.0 10 19.05 ± 1.12
中药组合物 I组 4.0 10 20+59± 1.63*
受试药低剂量组 2.0 10 20.07 ± 1.41
受试药中剂量组 4.0 10 22.16 ±2.05*
受试药高剂量组 12.0 10 22.14 ± 1.98**A 与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与中药组合物 I组比较, AP<0.05„
3 - 小结
根据中药组合物 II口服液复合粉人群推荐日摄入量 24g生药 /60kg体重扩大 5、 10 和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 2.0g生药、 4.0g生药、 12.0g生药 /kg体重, 另 设空白对照组、 中药组合物 I对照组。 采用清洁级健康雄性小鼠连续灌胃给予受试物, 45天后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研 究表明: 中药组合物 II口服液复合粉低、 中、 高剂量组小鼠常压耐缺氧时间明显长于空 白对照组。 中药组合物 II口服液复合粉中、 高剂量组小鼠亚硝酸钠中度存活时间、 脑缺 血性缺氧存活时间明显长于空白对照组。中药组合物 II口服液复合粉中、高剂量组小鼠、 常压耐缺氧时间、 亚硝酸钠中度存活时间、脑缺血性缺氧存活时间明显长于中药组合物 I对照组, 认为中药组合物 II口服液复合粉具有提高缺氧耐受力的保健功能, 且其提高 缺氧耐受能力功能优于中药组合物 I。
具体实施方式
实施例 1
1. 材料与方法
1.1 样品来源: 受试物为中药组合物 I口服液复合粉 (西洋参、 灵芝、 冬虫夏草) 由江 中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 11.41g,每人每日推荐摄入量
为: 24g生药 /60kg体重。对照物为中药组合物 II复合粉(西洋参、灵芝、发酵虫草菌粉) 由江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 10.97g,每人每日推荐摄 入量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动 物中心提供,许可证号: SCXK赣) 2006— 0001。动物饲养于江西中医学院动物室, 环境 许可证: SYXK (;赣 )2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1 动物分组: 雄性昆明种小鼠 200只, 根据体重随机分为 4个亚组, 每组 50只。每 个亚组动物随机分为空白对照组、 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组, 中药组合物
II组, 每组 10只。
1.3.2剂量设计:受试药中药组合物 I口服液复合粉每人每日推荐摄入量为 : 200mL/60kg 体重, 120g总生药材配制成 lOOOmL中药组合物 I口服液,每人每日推荐摄入量为: 24g 生药 /60kg体重, 由此推算出小鼠每日摄入量为: 低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量 组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度 (0.0175g干粉 /mL、 0.0350g干粉 /mL、 0.1050g干粉 /mL)的灌胃液进行实验, 小鼠灌胃量按 0.1mL/10g体重计算。 中药组合物 II每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重,换算为小鼠的剂量为 4.0g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0365g干粉 /mL灌胃液进行 实验, 灌胃量按 0.1mL/10g体重计算。 空白对照组给予等体积蒸馏水灌胃, 每日灌胃 1 次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以普通饲料, 自由进食、 饮水。 30天后对各亚组小鼠进 行缓解体力疲劳功能检验。
1.3.3 负重游泳实验:第 1亚组 10只小鼠末次给予受试样品 30min后,于鼠尾根部负荷 5%体重的铅皮, 然后置小鼠在游泳箱中游泳(水深 30cm, 水温 25 °C±1.0°C ), 记录小 鼠自游泳开始至死亡的时间, 作为小鼠负重游泳时间。
1.3.4血清尿素氮测定: 第 2亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 在温度为 30°C 的水中不负重游泳 90min, 休息 60min后拔眼球采全血约 0.5mL, 置 4°C冰箱约 3h, 血 凝固后 2000prn/min离心 15min, 分离血清测尿素氮含量。用奥林巴斯 AU400全自动生 化分析仪 (日本) 测定血清尿素氮, 试剂采用日本第一化学株式会社试剂。
1.3.5 肝糖原测定: 第 3亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 处死动物, 取肝脏经 生理盐水漂洗后用滤纸吸干, 精确称取肝脏 100mg, 加入 8mL TCA, 每管匀浆 lmin,
将匀浆液倒入离心管,以 3000转 /min离心 15min,将上清液转移至另一试管内。取 lmL 上清液放入 10mL离心管中,每管加入 95%的乙醇 4mL,充分混匀至两种液体间不留有 界面。 用封口膜将离心管口封住, 室温下竖立放置过夜。 沉淀完全后, 将试管于 3000 转 /min离心 15min,小心倒掉上清液并使试管倒立放置 10min。然后用 2mL蒸馏水溶解 糖原, 用蒽酮法测定肝糖原含量。
1.3.6乳酸测定: 第 4亚组 10只小鼠末次灌胃 30min后, 采尾血 20μ1,然后小鼠不负重 在温度为 30°C的水中游泳 10min, 于游泳后 Omin和 20min各分别采血 20μ1, 将三次采 得的血样分别加入 0.48mL 1% NaF溶液中充分混匀至透明, 然后加入 1.5mL蛋白沉淀 剂, 振荡混匀, 于 3000转 /min离心 lOmin, 取上清液测定乳酸含量, 并计算 3个时间 点血乳酸曲线下面积。
血乳酸曲线下面积 = 1/2*(;游泳前血乳酸值 +游泳后 Omin 的血乳酸值) * 10+1/2,游泳后 Omin的血乳酸值 +游泳后休息 20min的血乳酸值) *20
1.3.7统计方法: 实验数据以 i±s表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时中药组 合物 I口服液各剂量组、 中药组合物 II组测定指标与空白对照组之间的差异, 以及中药 组合物 I口服液各剂量组与中药组合物 II组之间的差异, P<0.05 判断为差异具有显著 性, P<0.01判断为差异具有极显著性。
2. 结果-
2.1 动物体重增长情况: 结果见表 1。 与空白对照组比较, 中药组合物 I口服液各剂量 组小鼠体重无显著性差异, 与原方组比较, 中药组合物 I口服液各剂量组小鼠体重无显 著性差异。
中药组合物 I口服液对小鼠体重增长的影响 (g, ¾s)
剂量 动物数
组别 初始体重 终末体重
( 生药 kg) (只)
空白对照组 0.0 10 19.24±1.08 39.65土 3.01 第
中药组合物 II组 4.0 10 19.29±1.25 39.69±3.20 受试药低剂量组 2.0 10 19.03±1.28 38.46±3.05 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19.16±1.23 39.02±2.87 组
受试药高剂量组 12.0 10 19.19±1.17 39.57±2.90 第 空白对照组 0.0 10 19.45±1.06 38.45±3.21
二 中药组合物 II组 4.0 10 19.52±1.15 39.29±2.08 亚 受试药低剂量组 2.0 10 19.40±1.20 39.45士 3.21 组 受试药中剂量组 4.0 10 19.55±1.29 38.90士 2.78 受试药高剂量组 12.0 10 19.43±1.24 39.43±3.54 空白对照组 0.0 10 19.32±1.01 39.63±3.09 第
中药组合物 II组 4.0 10 19.29±0.96 39.46土 2.60 受试药低剂量组 2.0 10 19.35±1.21 38.69±3.32 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19.38±1.20 38.65±2.34 组
受试药高剂量组 12.0 10 19.29±1.23 39.00±3.52 空白对照组 0.0 10 19.33±1.29 39.43±2.26 第
中药组合物 II组 4.0 10 19.29±1.30 38.72±2.80 四
受试药低剂量组 2.0 10 19.53±1.26 38.92士 2.75 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19 43±1.21 38 +47士 3 +20 组
受试药高剂量组 12.0 10 19. 52±1.24 38.54士 2.44
2.2对小鼠负重游泳时间的影响: 结果见表 2。 与空白对照组比较, 中药组合物 I口服 液低、 中、 高剂量组及中药组合物 U组小鼠负重游泳时间均明显升高, 与中药组合物 U 组相比较, 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠负重游泳时间均明显升高。
中药组合物 I口服液对小鼠负重游泳时间的影响 ( i±s)
剂量 动物数 负重游泳时间 组别
(g生药 kg) (只) (min)
空白对照组 0.0 10 3.81±0.97 中药组合 II物组 4.0 10 4.92±1.00* 受试药低剂量组 2.0 10 4.93±1.28* 受试药中剂量组 4.0 10 5.94士 1.11*
受试药高剂量组 12.0 10 6.59士 1.01**A A
与空白对照组比较, *P<0.05 ; 与中药组合物 II组相比, A P<0.05, A AP<0.01。
2.3 对小鼠血清尿素氮的影响: 结果见表 3。 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组 及中药组合物 II组小鼠不负重游泳 90min后,血清尿素氮水平与空白对照组比较未见
明显差异, 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组小鼠不负重游泳 90min后, 血清尿 素氮水平与中药组合物 II组比较未见明显差异。
2.4对小鼠肝糖原的影响: 结果见表 3。 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组及中药 组合物 II组各组小鼠肝糖原水平明显高于空白对照组, 且差异具有显著性, 中药组合物
I口服液中、 高剂量组小鼠肝糖原水平明显高于中药组合物 II组, 且差异具有显著性。
表 3 中药组合物 I口服液对小鼠血清尿素氮和肝糖原的影响 ( i±s)
剂量 动物数 尿素氮 肝糖原
组别 (g生药/ kg)
(只) ( mmol L ) (mg/g肝组织) 空白对照组 0.0 10 9.58±1.72 15.54±3.44 中药组合物 II组 4.0 10 10.05±1.33 19.91±4.92* 受试药低剂量组 2.0 10 9.80±2.01 20.28±4.07* 受试药中剂量组 4.0 10 9.47士 1.83 23.50±3.55**A 受试药高剂量组 12.0 10 9+62士1+69 24.26±3+ 17* 与空白对照组比较, *P<0.05 ; 与中药组合物 II组相比, A P<0.05 A AP<0.01
2.5 对小鼠血乳酸的影响: 结果见表 4。 中药组合物 I口服液各剂量组及中药组合物 II 组小鼠游泳后即刻血乳酸水平、休息 20min后血乳酸水平及曲线下面积均显著低于空白 对照组, 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠游泳后即刻血乳酸水平、休息 20min后 血乳酸水平及曲线下面积均显著低于中药组合物 II对照组。
表 4 中药组合物 I口服液对小鼠血乳酸的影响 (mg/L x±s) 剂量 动物数 游泳后 游泳后
组别 游泳前 曲线下面积
(g生药 /kg) (只) 0mm 20mm 空白对照组 0.0 10 209.40±39.02 579.60±57.51 320.40±36.92 12971.00±635.14 中药组合物 II组 4.0 10 214.80±38.67 503.60±52.12* 273.00±31.61 * 11174.00±927.12:}: :}: 受试药低剂量组 2.0 10 221.60±37.80 497.80±72.16 272.70±25.71 ** 1112400±11%.67** 受试药中剂量组 4.0 10 204.20 39.24 444.50±59.55* 239.60±36.84*** 10086.00±1229.21 **4 受试药高剂量组 12.0 10 210.80 35.29 430.30 47.57* A 205.80 21.57**" 9432.00 775.52 与空白对照组比较, *P<0.05 ; 与中药组合物 II组相比, A P<0.05 A AP<0.01 结论:
根据本发明中药组合物 I口服液复合粉人群推荐日摄入量 24.0g生药 /60kg体重扩大
5、 10和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, S卩 2.0g、 4.0、 12.0g生药 /kg体重, 另设空 白对照组与中药组合物 II对照组。 采用清洁级健康雄性昆明种小鼠连续灌胃给予受试 物, 30 天后进行实验并检测相关指标。 实验结果以 P<0.05 判断为差异具有显著性及 P<0.01判断为差异具有极显著性。 经动物实验研究表明: 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组均可显著减少小鼠不负重游泳前及游泳后 Omin和 20min血乳酸测定曲线下的 面积, 显著升高小鼠静息状态下的肝糖原水平, 并且中药组合物 I口服液低、 中、 高剂 量组小鼠负重游泳时间显著高于空白对照组。 与中药组合物 II对照组相比, 中药组合物 I口服液中、 高剂量组均可显著减少小鼠不负重游泳前及游泳后 Omin和 20min血乳酸 测定曲线下的面积, 显著升高小鼠静息状态下的肝糖原水平, 并且中药组合物 I口服液 中、 高剂量组小鼠负重游泳时间显著高于中药组合物 II对照组, 认为中药组合物 I口服 液具有缓解体力疲劳功能, 且其缓解体力疲劳功能优于中药组合物 Π对照组。
实施例 2
1. 材料与方法
1.1 样品来源: 受试物为组合物 II复合粉 (西洋参、 灵芝、 冬虫夏草、 玫瑰花) 由江中 药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.19g,每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重。对照物为组合物 I复合粉(西洋参、灵芝、发酵虫草菌粉、玫瑰花) 由江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.56g,每人每日推荐摄 入量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2 实验动物及环境: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动 物中心提供,许可证号: SCXK (;赣) 2006— 0001。动物饲养于江西中医学院动物室, 环境 许可证: SYXK(赣;) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1 动物分组: 雄性昆明种小鼠 200只, 根据体重随机分为 4个亚组, 每组 50只。每 个亚组动物随机分为空白对照组、 组合物 II低、 中、 高剂量组, 组合物 I组, 每组 10 只。
1.3.2剂量设计:受试药组合物 II复合粉每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g 总生药材配制成 lOOOmL组合物 II, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此 推算出小鼠每日摄入量为:低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸 馏水配制成相应浓度 (0.0164g干粉 /mL、 0.0328g干粉 /mL、 0.0984g干粉 /mL) 的灌胃
液进行实验, 小鼠灌胃量按 0.1mL/10g体重计算。组合物 I每人每日推荐摄入量为: 24g 生药 /60kg体重,换算为小鼠的剂量为 4.0g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0318g干粉 /mL灌胃液进行实验, 灌胃量按 0.1mL/10g体重计 算。 空白对照组给予等体积蒸馏水灌胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以 普通词料, 自由进食、 饮水。 30天后对各亚组小鼠进行缓解体力疲劳功能检验。
1.3.3 负重游泳实验:第 1亚组 10只小鼠末次给予受试样品 30min后,于鼠尾根部负荷 5%体重的铅皮, 然后置小鼠在游泳箱中游泳(水深 30cm, 水温 25 °C±1.0°C ), 记录小 鼠自游泳开始至死亡的时间, 作为小鼠负重游泳时间。
1.3.4血清尿素氮测定: 第 2亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 在温度为 30°C 的水中不负重游泳 90min, 休息 60min后拔眼球采全血约 0.5mL, 置 4°C冰箱约 3h, 血 凝固后 2000prn/min离心 15min, 分离血清测尿素氮含量。用奧林巴斯 AU400全自动生 化分析仪 (日本) 测定血清尿素氮, 试剂采用日本第一化学株式会社试剂。
1.3.5 肝糖原测定: 第 3亚组 10只小鼠末次给予受试物 30min后, 处死动物, 取肝脏经 生理盐水漂洗后用滤纸吸干, 精确称取肝脏 100mg, 加入 8mL TCA, 每管匀浆 lmin, 将匀浆液倒入离心管,以 3000转 /min离心 15min,将上清液转移至另一试管内。取 lmL 上清液放入 10mL离心管中,每管加入 95%的乙醇 4mL,充分混匀至两种液体间不留有 界面。 用封口膜将离心管口封住, 室温下竖立放置过夜。 沉淀完全后, 将试管于 3000 转 /min离心 15min,小心倒掉上清液并使试管倒立放置 10min。然后用 2mL蒸馏水溶解 糖原, 用蒽酮法测定肝糖原含量。
1.3.6乳酸测定: 第 4亚组 10只小鼠末次灌胃 30min后, 采尾血 20μ1,然后小鼠不负重 在温度为 30°C的水中游泳 10min, 于游泳后 Omin和 20min各分别采血 20μ1, 将三次采 得的血样分别加入 0.48mL 1% NaF溶液中充分混匀至透明, 然后加入 1.5mL蛋白沉淀 剂, 振荡混匀, 于 3000转 /min离心 lOmin, 取上清液测定乳酸含量, 并计算 3个时间 点血乳酸曲线下面积。
血乳酸曲线下面积 = 1/2*(游泳前血乳酸值 +游泳后 Omin 的血乳酸值) * 10+1/2*(游泳后 Omin的血乳酸值 +游泳后休息 20min的血乳酸值) *20
1.3.7统计方法: 实验数据以 ^ ±s表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时组合物 II各剂量组、 组合物 I组测定指标与空白对照组之间的差异, 以及组合物 II各剂量组与 组合物 I组之间的差异, PO.05判断为差异具有显著性, PO.01判断为差异具有极显著 性。
2. 结果-
2.1 动物体重增长情况: 结果见表 1。 与空白对照组比较, 组合物 II各剂量组小鼠体重 无显著性差异, 与组合物 I组比较, 组合物 II各剂量组小鼠体重无显著性差异。
组合物 II对小鼠体重增长的影响 (g, ¾s)
剂量 动物数
组别 初始体重 终末体重
(g生药 kg) (只)
空白对照组 0.0 10 19.75±1.12 39.25士 3.46 第
组合物 I组 4.0 10 19.86±1.21 39.45±3.50 受试药低剂量组 2.0 10 19.92±1.30 38.33±3.28 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19.68±1.16 39.63±2.86 组
受试药髙剂量组 12.0 10 19.74±1.33 39.85±2.94 空白对照组 0.0 10 19.85±1.25 38.90±3.27 第
组合物 I组 4.0 10 19.92±1.30 39.47士 3.08 受试药低剂量组 2.0 10 19 80±1.28 39+82士 3+44 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19.75±1.27 38.70士 2.90 组
受试药高剂量组 12.0 10 19.86±1.32 39.28士 3.28 空白对照组 0.0 10 19.92±1.25 39.04士 3.21 第
组合物 I组 4.0 10 19.68±1.20 39.22±2.72 受试药低剂量组 2.0 10 19.94±1.33 39.09±3.29 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19.76±1.26 38.79±2.70 组
受试药高剂量组 12.0 10 19.82±1.30 39.22±3.44 空白对照组 0.0 10 19.78±1.21 39.38±3.26 第
组合物 I组 4.0 10 19.69±1.32 38.98士 3.80 四
受试药低剂量组 2.0 10 19 90±1.22 38+90士 2+90 亚
受试药中剂量组 4.0 10 19.82±1.25 38.92士 3.16 组
受试药高剂量组 12.0 10 19.78±1.27 38.93士 3.40
2.2对小鼠负重游泳时间的影响: 结果见表 2。 与空白对照组比较, 组合物 II低、 中、 高剂量组及组合物 I小鼠负重游泳时间均明显升高,与组合物 I组相比较,组合物 II中、 高剂量组小鼠负重游泳时间均明显升高。
组合物 II对小鼠负重游泳时间的影响 (
剂量 动物数 负重游泳时间 组别
(g生药/ kg) (只) (min)
空白对照组 0.0 10 3.44±0.82
组合物 I组 4.0 10 4.78士 1.06*
受试药低剂量组 2.0 10 4.96±1.28*
受试药中剂量组 4.0 10 5.83±1.03**A 受试药高剂量组 12.0 10 6.52土 1.01**"
与空白对照组比较, *P<0.05; 与组合物 I组相比, A P<0.05, A AP<0.01 o
2.3 对小鼠血清尿素氮的影响: 结果见表 3。 组合物 II低、 中、 高剂量组及组合物 I组 小鼠不负重游泳 90min后, 血清尿素氮水平与空白对照组比较未见明显差异, 组合物 II 低、 中、 高剂量组小鼠不负重游泳 90min后, 血清尿素氮水平与组合物 I组比较未见明 显差异。
2.4对小鼠肝糖原的影响: 结果见表 3。 组合物 II低、 中、 高剂量组及组合物 I组各组 小鼠肝糖原水平明显高于空白对照组, 且差异具有显著性, 组合物 II中、高剂量组小鼠 肝糖原水平明显高于组合物 I组, 且差异具有显著性。
表 3 组合物 II对小鼠血清尿素氮和肝糖原的影响 (
剂量 动物数 尿素氮 肝糖原 组别 (g生药/ kg)
(只) ( mmol L ) (mg/g肝组织) 空白对照组 0.0 10 9.67±1.80 15.63±3.30 组合物 I组 4.0 10 9.52±1.60 20.07±4.90* 受试药低剂量组 2.0 10 9.66±2.06 20.70±3.66* 受试药中剂量组 4.0 10 9.52±1.64 23.79±3.35**A 受试药高剂量组 12.0 10 9.88士 1.72 25.43±3.44**A 与空白对照组比较, *P<0.05; 与组合物 I组相比, A P<0.05, A AP<0.01。
2.5 对小鼠血乳酸的影响: 结果见表 4。 组合物 II各剂量组及组合物 I组小鼠游泳后即 刻血乳酸水平、休息 20min后血乳酸水平及曲线下面积均显著低于空白对照组, 组合物 II中、高剂量组小鼠游泳后即刻血乳酸水平、休息 20min后血乳酸水平及曲线下面积均
显著低于组合物 I对照组。
表 4 组合物 II对小鼠血乳酸的影响 (mg/L x±s)
剂量 动物数 游泳后 游泳后
组别 游泳前 曲线下面积
(g生药/ kg)
(只) Omin 20min
空白对照组 0.0 10 212.50 39.91 580.50 61.31 326.20 36.33 13017.00 747.40 组合物 I组 4.0 10 215.70 37.99 495.00 50.91 ** 265.00 31.50^ 11157.50±907.94** 受试药低剂量组 2.0 10 223.50 36.62 496.40 71.53** 254.10 25.95** 11104.50 1191.40** 受试药中剂量组 4.0 10 205.30±39.81 440.10±6U5**A 234.80±36.52**A 10061.00±1237.23* 受试药高剂量组 12.0 10 213.30±35.31 419.10±47.39**A A 205.10±22.76**i A 9404.00±977.83**"
与空白对照组比较, *P<0.05; 与组合物 I组相比, A P<0.05 Α ΑΡ<0.01 ο
3. 结论:
根据本发明中药组合物口服液复合粉人群推荐日摄入量 24.0g生药 /60kg体重扩大 5 10和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 2.0g 4.0 12.0g生药 /kg体重, 另设空白对 照组与组合物 I对照组。采用清洁级健康雄性昆明种小鼠连续灌胃给予受试物, 30天后 进行实验并检测相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性及 P<0.01判断为 差异具有极显著性。经动物实验研宄表明: 组合物 II低、 中、 高剂量组均可显著减少小 鼠不负重游泳前及游泳后 Omin和 20min血乳酸测定曲线下的面积, 显著升高小鼠静息 状态下的肝糖原水平, 并且组合物 II低、 中、高剂量组小鼠负重游泳时间显著高于空白 对照组。 与组合物 I对照组相比, 组合物 II中、 高剂量组均可显著减少小鼠不负重游泳 前及游泳后 Omin和 20min血乳酸测定曲线下的面积, 显著升高小鼠静息状态下的肝糖 原水平, 并且组合物 II中、 高剂量组小鼠负重游泳时间显著高于组合物 I对照组, 认为 组合物 II具有缓解体力疲劳功能, 且其缓解体力疲劳功能优于组合物 I对照组。
实施例 3
1.材料与方法
1.1 样品来源: 受试物为组合物 II复合粉(西洋参、 灵芝、 冬虫夏草、 玫瑰花) 由江中 药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.19g,每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重。 对照物为组合物 I复合粉(西洋参、 灵芝、 虫草菌粉、 玫瑰花) 由 江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.56g,每人每日推荐摄入 量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性 SD大鼠, 体重 150-200g, 由江西中医学院实验
动物中心提供, SCXK (赣) 2006-0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环境许可 证: SYXK(赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1动物分组:雄性 SD大鼠 60只,体重 150-200g,基础饲料适应性喂养一周后,取血, 测定血清总胆固醇(TC;)、 甘油三酯(TG)和高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)。 根据 TC 水平和体重将大鼠分为 6组, 每组 10只。 设基础饲料对照组、 高脂饲料对照组、 受试 药低、 中、 高三个剂量组及组合物 I对照组。
1.3.2剂量设置: 受试药组合物 II每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g总生 药材配制成 lOOOmL组合物 II口服液, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此推算出大鼠每日摄入量为:低剂量组为 l .Og生药 /kg体重,中剂量组为 2.0g生药 /kg 体重; 高剂量组为 6.0g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 2.5、 5和 15倍。 将 样品以蒸馏水配制成相应浓度(0.0082g干粉 AnL、 0.0164g干粉 /mL、 0.0492g干粉 /mL) 的灌胃液进行实验,大鼠灌胃量按 l .OmL/lOOg体重计算。组合物 I每人每日推荐摄入量 为: 24g生药 /60kg体重, 换算为大鼠的剂量为 2.0g生药 /kg体重(相当于人每日摄入量 的 5倍),将样品以蒸馏水配制成 0.0159g干粉 /mL灌胃液进行实验,灌胃量按 1.0mL/100g 体重计算。 实验开始后, 除基础饲料对照组喂饲基础饲料外, 其余各组大鼠均喂词高脂 饲料(高脂饲料组分: 78.8%基础饲料, 1%胆固醇, 10%蛋黄粉, 10%猪油, 0.2%胆盐)。 受试物组和组合物 I组每日分别给予不同浓度药液, 基础饲料对照组、 高脂饲料对照组 给予等体积蒸馏水灌胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。 每周称体重。 各组动物自由进食、 饮水。 30天后, 股动脉取血, 分离血清检测相关指标。
1.3.3 检验指标: TC (酶法)、 TG (酶法)、 HDL-C (直接法), Beckman-CX7全自动血 液生化仪, 试剂购自南京建成。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 s表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时各受试 物剂量组、 组合物 I组与高脂对照组之间, 以及受试物各剂量组与组合物 I组大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平与的差异, PO.05判断为差异具有显著性, P<0.01判断为差异 具有极显著性。
2. 结果
2.1 组合物 II对实验大鼠体重的影响
实验结果见表 1。 组合物 II各剂量组及组合物 I组大鼠体重与高脂饲料对照组比较 无明显差异, 组合物 II各剂量组大鼠与组合物 I对照组大鼠体重比较无明显差异。
表 1. 组合物 II对实验大鼠体重的影响 (g, X±S)
剂量
组别 n 0周 1周 2周 3周 4周
(g生药 kg)
基础词料对照组 0.0 10 175.8±13.4 223.6 15.0 272.1±22.1 325.8±29.0 385.2 32.1 高脂词料对照组 0.0 10 174.6 12.0 234.8 14.5 269.4±23.2 329.0±29.8 376.7 31.5 组合物 I组 2.0 10 179.1±11.5 225.2±13.2 279.4+24.0 329.2+27.8 389.0±32.0 受试药低剂量组 1.0 10 180.5±10.7 232.6±14.7 262.8+25.8 336.5+27.2 388.1±30.2 受试药中剂量组 2.0 10 182.3±10.9 224.0士 12.6 265.4+23.4 338.2+25.0 385.3±29.8 受试药高剂量组 6.0 10 179.6±11.6 232.9±13.0 268.9±22.8 330.7±27.1 376.4±27.7
2.2 组合物 II对大鼠血脂的影响
实验结果见表 2和表 3。 实验开始时, 各组大鼠血清 TC、 TG、 HDL-C水平无明显 差异。实验结束时, 高脂饲料对照组大鼠血清 TC和 TG水平显著高于基础饲料对照组, 表明高脂模型的成功建立; 组合物 II各剂量组及组合物 I组大鼠血清 TC水平低于高脂 词料对照组, 差异具有显著性; 组合物 II低、 中、 高剂量组及组合物 I组大鼠血清 TG 低于高脂饲料对照组, 差异具有显著性; 组合物 II低、 中、 高剂量组及组合物 I组大鼠 血清 HDL-C水平与高脂饲料对照组相比, 差异无显著性。 组合物 II中、 高剂量组大鼠 血清 TC水平低于组合物 I对照组, 差异具有显著性; 组合物 II中、 高剂量组大鼠血清 TG低于组合物 I对照组,差异具有显著性;组合物 II低、中、高剂量组大鼠血清 HDL-C 水平与组合物 I对照组相比, 差异无显著性。
实验开始时大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平 (mmol/L, X±S ) 剂量 动物数
组别 TC TG HDL-C
(g生药 kg) (只)
基础词料对照组 0.0 10 2.27±0.30 1.30±0.20 1.25±0.18 高脂词料对照组 0.0 10 2.32±0.25 1.26土 0.32 1.28±0.22 组合物 I组 2.0 10 2.30±0.28 1.35±0.31 1.26±0.16 受试药低剂量组 1.0 10 2.20±0.32 1.30±0.23 1.24±0.17 受试药中剂量组 2.0 10 2.33±0.25 1.27±0.27 1.20±0.21 受试药高剂量组 6.0 10 2.21±0.28 1.2 0.22 1.26±0.12 表 3.组合物 II对大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平的影响 ( mmol/L, X+S )
剂量 动物数
组别 TC TG HDL-C
( 生药kg) (只)
基础饲料对照组 0.0 10 2.24±0.24** 1.20±0.25* 1.25±0.18 高脂饲料对照组 0.0 10 3.80±0.33 1.87±0.21 1.26±0.22 组合物 I组 2.0 10 3.10±0.40* 1.38±0.21* 1.20±0.20 受试药低剂量组 1.0 10 3.12±0.33* 1.32±0.30* 1.32±0.18 受试药中剂量组 2.0 10 2.20±0.29**A 0.93±0.32*A 1.30±0.22 受试药高剂量组 6.0 10 2.07±0.32**A 0.80±0.20**A 1.30±0.20 与基础饲料对照组相比, * P<0.05, P<0.05, 与组合物 I组相比, ▲ P<0.05, P<0.01。
3. 结论:
根据组合物 II人群推荐日摄入量 24g生药 /60kg体重扩大 2.5、 5和 15倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 l .Og生药、 2.0g生药、 6.0g生药 /kg体重, 另设基础饲料对照组、 高脂饲料对照组。采用清洁级健康雄性 SD大鼠连续灌胃给予受试物, 30天后进行检测 相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研究表明: 组合物 II低、 中、 高剂量组大鼠血清总胆固醇 (TC ) 以及血清甘油三酯 (TG) 明显低于高脂 词料对照组。 组合物 II中、 高剂量组大鼠血清总胆固醇(TC) 以及血清甘油三酯(TG) 明显低于组合物 I对照组, 认为组合物 II具有辅助降血脂功能, 且其降血脂功能优于组 合物 I组。
实施例 4
1.材料与方法
1.1 样品来源: 受试物为中药组合物 I口服液复合粉(西洋参、 灵芝、 冬虫夏草) 由江 中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 11.41g,每人每日推荐摄入量 为: 24g生药 /60kg体重。 对照物为中药组合物 II复合粉(西洋参、 灵芝、 虫草菌粉) 由 江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 10.97g,每人每日推荐摄入 量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性 SD大鼠, 体重 150-200g, 由江西中医学院实验 动物中心提供, SCXK (;赣 )2006-0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环境许可 证: SYXK(赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1动物分组:雄性 SD大鼠 60只,体重 150-200g,基础饲料适应性喂养一周后,取血, 测定血清总胆固醇(TC;)、 甘油三酯(TG)和高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)。 根据 TC 水平和体重将大鼠分为 6组, 每组 10只。 设基础饲料对照组、 高脂饲料对照组、 受试 药低、 中、 高三个剂量组及中药组合物 II对照组。
1.3.2剂量设置: 受试药中药组合物 I口服液每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g总生药材配制成 lOOOmL中药组合物 I口服液, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此推算出大鼠每日摄入量为: 低剂量组为 l .Og生药 /kg体重, 中剂量组 为 2.0g生药 /kg体重; 高剂量组为 6.0g生药/ kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 2.5、 5和 15倍。将样品以蒸馏水配制成相应浓度(0.0088g干粉 /mL、0.0175g干粉 /mL、0.0525g 干粉 /mL)的灌胃液进行实验, 大鼠灌胃量按 1.0mL/100g体重计算。 中药组合物 II每人 每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 换算为大鼠的剂量为 2.0g生药 /kg体重(相当 于人每日摄入量的 5倍),将样品以蒸馏水配制成 0.0182g干粉 /mL灌胃液进行实验, 灌 胃量按 1.0mL/100g体重计算。 实验开始后, 除基础饲料对照组喂词基础饲料外, 其余 各组大鼠均喂饲高脂饲料 (高脂饲料组分: 78.8%基础饲料, 1%胆固醇, 10%蛋黄粉, 10%猪油, 0.2%胆盐)。 受试物组和中药组合物 II组每日分别给予不同浓度药液, 基础 词料对照组、 高脂饲料对照组给予等体积蒸馏水灌胃, 每日灌胃 1次, 连续 30天。 每 周称体重。 各组动物自由进食、 饮水。 30天后, 股动脉取血, 分离血清检测相关指标。 1.3.3 检验指标: TC (酶法)、 TG (酶法)、 HDL-C (直接法), Beckman-CX7全自动血 液生化仪, 试剂购自南京建成。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 表示, 采用单因素方差分析, 比较实验结束时各受试 物剂量组、 中药组合物 II组与高脂对照组之间, 以及受试物各剂量组与中药组合物 II组 大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平与的差异, P<0.05判断为差异具有显著性, P<0.01判 断为差异具有极显著性。
2. 结果
2.1 中药组合物 I口服液对实验大鼠体重的影响
实验结果见表 i。 中药组合物 I口服液各剂量组及中药组合物 Π组大鼠体重与高脂 饲料对照组比较无明显差异, 中药组合物 I口服液各剂量组与中药组合物 II对照组大鼠 体重比较无明显差异。
表 1. 中药组合物 I口服液对实验大鼠体重的影响 (g, x±s)
剂量
组别 n 0周 1周 2周 3周 4周
(g生药 Ag)
基础词料对照组 0.0 10 166+3±12+2 212.7±14.9 260.4±20.3 322.0±29.5 383.8±30.4 高脂词料对照组 0.0 10 163.9 10.6 221.0土 16.3 258.3±22.6 321.6±29.1 379.5 31.2 中药组合物 II组 2.0 10 169.9 11.9 216.5 14.2 268.9±25.4 324.5±27.6 385.5 33.5 受试药低剂量组 1.0 10 170.4+9.8 220.3±14.9 266.0+25.1 326.7+25.0 386.7±34.2 受试药中剂量组 2.0 10 172.4±10.1 215.8士 15.0 267.1+23.0 329.5+25.8 379.0±27.8 受试药高剂量组 6.0 10 169.3±11.2 220.1±13.2 262.7+22.5 320.6+24.5 373.7±27.0 中药组合物 I口服液对大鼠血脂的影响
实验结果见表 2和表 3。 实验开始时, 各组大鼠血清 TC、 TG、 HDL-C水平无明显 差异。实验结束时, 高脂伺料对照组大鼠血清 TC和 TG水平显著高于基础词料对照组, 表明高脂模型的成功建立; 中药组合物 I口服液各剂量组及中药组合物 II组大鼠血清 TC水平低于高脂伺料对照组, 差异具有显著性; 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量 组及中药组合物 II组大鼠血清 TG低于高脂饲料对照组, 差异具有显著性; 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组及中药组合物 II组大鼠血清 HDL-C水平与高脂饲料对照组 相比, 差异无显著性。 中药组合物 I口服液中、 高剂量组大鼠血清 TC水平低于中药组 合物 II对照组, 差异具有显著性; 中药组合物 I口服液中、 高剂量组大鼠血清 TG低于 中药组合物 II对照组, 差异具有显著性; 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组大鼠血 清 HDL-C水平与中药组合物 II对照组相比, 差异无显著性。
实验开始时大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平 (mmol/L, X±S )
剂量 动物数
组别 (g生药 /kg) TC TG HDL-C
(只)
基础饲料对照组 0.0 10 2.42士0.33 1.28士0.21 1.21±0.15 高脂饲料对照组 0+0 10 2.47±0.35 1.29±0.30 1.18±0.20 中药组合物 II组 2.0 10 2.36±0.34 1.32±0.35 1.16±0.12 受试药低剂量组 1.0 10 2.41±0.30 1.35±0.33 1.14±0.18 受试药中剂量组 2.0 10 2.43±0.26 1.30±0.34 1.10±0.22 受试药高剂量组 6.0 10 2.36±0.25 1.37±0.32 1.13±0.15 表 3.中药组合物 I口服液对大鼠血清 TC、 TG和 HDL-C水平的影响 (mmol/L, X+S)
剂量 动物数
组别 (g生药 /kg) TC TG HDL-C
(只)
基础饲料对照组 0.0 10 2.61士 0.26* 1+31±0.25* 1.18±0.14 高脂词料对照组 0.0 10 3.77士0.30 1.76±0.24 1.17±0.12 中药组合物 II组 2.0 10 S + ^O+ 1.15±0.20 受试药低剂量组 1.0 10 3.09±0.38* 1+32士0.30* 1.20±0.18
2.0 10 2.40±0.29** 1.03±0.32*A 1.16±0.21 受试药中剂量组 ▲
6.0 10 2.18±0.36 1.22±0.25 受试药高剂量组 ▲ 与基础饲料对照组相比, * P<0.05, ** P<0.05, 与中药组合物 II组相比, Α Ρ<0+05, Ρ<0.01。
3. 结论:
根据中药组合物 I口服液人群推荐日摄入量 24g生药 /60kg体重扩大 2.5、 5和 15 倍设置低、 中、 高三个剂量组, 即 l.Og生药、 2.0g生药、 6.0g生药 /kg体重, 另设基础 饲料对照组、 高脂饲料对照组。 采用清洁级健康雄性 SD大鼠连续灌胃给予受试物, 30 天后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研究 表明: 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组大鼠血清总胆固醇(TC)以及血清甘油三 酯 (TG) 明显低于高脂饲料对照组。 中药组合物 I口服液中、 高剂量组大鼠血清总胆 固醇 (TC) 以及血清甘油三酯 (TG) 明显低于中药组合物 II对照组, 认为中药组合物 I口服液具有辅助降血脂功能, 且其降血脂功能优于中药组合物 II组。
实施例 5
1. 材料与方法
1.1 样品来源: 受试物为组合物 II复合粉 (西洋参、 灵芝、 冬虫夏草、 玫瑰花) 由江中 药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.19g,每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重。 对照物为组合物 I复合粉(西洋参、 灵芝、 虫草菌粉、 玫瑰花) 由 江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.56g,每人每日推荐摄入 量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2 实验动物及环境: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动 物中心提供, 许可证号: SCXK赣) 2006— 0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环
境许可证: SYXK (赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1 动物分组: 小鼠 60只, 根据体重随机分为 6组, 设立空白对照组、 模型对照组、 组合物 I组、 组合物 II低、 中、 高剂量组, 每组 10只。
1.3.2剂量设计:受试药组合物 II复合粉每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g 总生药材配制成 lOOOmL组合物 II, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此 推算出小鼠每日摄入量为:低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸 馏水配制成相应浓度 (0.0164g干粉 /mL、 0.0328g干粉 /mL、 0.0984g干粉 /mL) 的灌胃 液进行实验, 小鼠灌胃量按 0.1mL/10g体重计算。组合物 I每人每日推荐摄入量为: 24g 生药 /60kg体重,换算为小鼠的剂量为 4.0g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0318g干粉 /mL灌胃液进行实验, 灌胃量按 0.1mL/10g体重计 算。 空白对照组和模型对照组给予等体积蒸馏水灌胃。 每日灌胃 1次, 连续 30天。 各 组小鼠均饲以普通饲料, 自由进食、 饮水。 30天后, 取血检测血清中超氧化物歧化酶
( SOD ), 谷胱甘肽过氧化物酶 (GSH-Px) 活力和丙二醛 (MDA) 含量。 此后, 除空 白对照组外, 各组给予 6Gy6QCc^射线全身 1次性照射, 照射后第 4天处死各组动物, 取肝组织检测超氧化物歧化酶(SOD)、 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活力和丙二醛
(MDA) 含量。
1.3.3检验指标:严格按照南京建成生物工程研究所试剂盒说明书测定血清和肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA含量。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 表示, 采用单因素方差分析, 比较辐照前各受试物 剂量组血清 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与空白对照组之间的差异; 比较辐照后各 受试物剂量组肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与模型对照组、 原方组之间 的差异, P<0.05判断为差异具有显著性。
2结果
2.1动物体重增长情况:
实验结果见表 1。 组合物 II各剂量组小鼠体重与空白对照组、 组合物 I组比较差异 无显著性。 见表 1。
表 1 组合物 II对小鼠体重增长的影响 (g, i+s)
S¾o mm 动物数 初始体重 终末体重 ^
(g生药 kg) (只)
空白对照组 0.0 10 19.82±1.12 33.30±3.37 模型对照组 0.0 10 19.67±0.99 33.52±3.46 组合物 I组 4.0 10 19.87土 1.30 33.68土 3.28 受试药低剂量组 2.0 10 19.68士1.12 33.20士 3.50 受试药中剂量组 4.0 10 19.58±1.32 33.80±3.20 受试药高剂量组 12.0 10 19.66±1.22 32.90±3.42
2.2组合物 II对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
实验结果见表 2。 与空白对照组相比较, 组合物 II各剂量组、 组合物 I组小鼠血清 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高, 同时血清 MDA含量显著降低。 与组合物 I组比较, 组合物 II复合粉各剂量组低、中、高剂量组小鼠血清 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高, 同时血清 MDA含量显著降低。
表 2.组合物 II对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响 (
剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g kg) (只) (EU) (U/mL) ( nmol/mL) 空白对照组 0.0 10 608.00±117.68 112.00±10.53 10.32±1.40 模型对照组 0.0 10 613.50土 100.46 109.50土 11.22 10.45±1.04 组合物 I组 4.0 10 727.20±113.18* 123 40±8.98** 9.48±1.00* 受试药低剂量组 2.0 10 731.50±71.93* 127.20土 11.09** 9.25±1.22* 受试药中剂量组 4.0 10 856.90±89.23**A A 135.80±12.16**A 8.45±0.81**A 受试药高剂量组 12.0 10 908.00±118.81**A A 140.00±11.89**A A 8.12±0.66**A A 与模型对照组比较, *P<0.05 , **P<0.01 ; 与组合物 I组比较, AP<0.05, AAP<0+01。
2.3组合物 II对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
实验结果见表 3。 与空白对照组相比较, 模型对照组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力 均显著降低, MDA含量显著升高, 表明辐照模型的成功建立。 与模型对照组比较, 组 合物 Π低、 中、 高剂量组及组合物 I组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均显著升高, 同时 组合物 II低、 中、 高剂量组及组合物 I组小鼠肝脏 MDA含量均显著降低。 与组合物 I 组比较, 组合物 II各剂量组中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高, 同时肝脏 MDA含量显著降低。
表 3.组合物 Π对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD、 MDA水平的影响 ( 土 S ) 剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g/kgbw) (只) (EU/ mgprot) (U/mgprot) (nmol/mgprot) 空白对照组 0.0 10 832.66±139.40** 146.20±13.22** 0.86±0.14** 模型对照组 0.0 10 489.70±109.20 108.70±12.67 1.38±0.12 组合物 I组 4.0 10 620+86士 110+55** 126.40±13.92** 1 20±0.10** 受试药低剂量组 2.0 10 610.30±109.90** 132.20±16.82** 1.17±0.20** 受试药中剂量组 4.0 10 738.66±121.50**A 145.20±16.80**A 0.97±0.18**A A
受试药高剂量组 12.0 10 786.30±120.22**A A 150.60±18.30**A A 0.85±0.14** 与模型对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与组合物 I组比较, AP<0.05, A AP<0.01。
3. 结论:
根据组合物 II人群推荐日摄入量 24.0g生 /60kg体重扩大 5、 10和 30倍设置低、中、 高三个剂量组, 即 2.0g生药、 4.0g生药、 12.0g生药 /kg体重, 另设空白对照组、模型对 照组和组合物 I组。采用清洁级健康雄性昆明种小鼠连续灌胃给予受试物, 30天后进行 检测相关指标。实验结果以 P<0.05, P<0.01判断为差异具有显著性和极显著性。经动物 实验研究表明: 组合物 II低、 中、 高剂量组均可提高小鼠血清 GSH-Px、 SOD活力, 均 可降低小鼠血清中 MDA含量。 组合物 II低、 中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活 力均显著高于经 6Gy6QCoY射线全身 1 次性照射的模型对照组, 且各剂量组小鼠肝脏 MDA含量均显著低于模型对照组。 组合物 II中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活 力均显著高于组合物 I对照组, 且中、 高剂量组小鼠肝脏 MDA含量均显著低于组合物 I对照组, 认为组合物 II复合粉具有抗氧化功能, 且抗氧化效果优于原方组。
实施例 6
1. 材料与方法
1.1 样品来源: 受试物为中药组合物 I口服液复合粉 (西洋参、 灵芝、 冬虫夏草) 由江 中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 11.41g,每人每日推荐摄入量 为: 24g生药 /60kg体重。 对照物为中药组合物 II复合粉(西洋参、 灵芝、 虫草菌粉) 由 江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 10.97g,每人每日推荐摄入 量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2实验动物及环境: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动 物中心提供, 许可证号: SCXKC赣) 2006— 0001。 动物饲养于江西中医学院动物室, 环 境许可证: SYXK (赣) 2004-0001, 词养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1 动物分组: 小鼠 60只, 根据体重随机分为 6组, 设立空白对照组、 模型对照组、 中药组合物 Π组、 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组, 每组 10只。
1.3.2剂量设计:受试药中药组合物 I口服液每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g总生药材配制成 lOOOmL中药组合物 I口服液, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此推算出小鼠每口摄入量为: 低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和
30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度(0.0175g干粉 /mL、 0.0350g干粉 /mL、 0.1050g 干粉 /mL) 的灌胃液进行实验, 小鼠灌胃量按 0.1mL/10g体重计算。 中药组合物 II每人 每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 换算为小鼠的剂量为 4.0g生药 /kg体重(相当 于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0365g干粉 /mL灌胃液进行实验, 灌胃量按 0. lmL/lOg体重计算。空白对照组和模型对照组给予等体积蒸馏水灌胃。每日 灌胃 1次, 连续 30天。 各组小鼠均饲以普通饲料, 自由进食、 饮水。 30天后, 取血检 测血清中超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活力和丙二醛(MDA) 含量。 此后, 除空白对照组外, 各组给予 6Gy6QCc^射线全身 1次性照射, 照射后第 4 天处死各组动物,取肝组织检测超氧化物歧化酶( SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px) 活力和丙二醛 (MDA) 含量。
1.3.3检验指标:严格按照南京建成生物工程研究所试剂盒说明书测定血清和肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA含量。
1.3.4 统计方法: 实验数据以 表示, 采用单因素方差分析, 比较辐照前各受试物 剂量组血清 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与空白对照组之间的差异; 比较辐照后各 受试物剂量组肝脏组织中 SOD、 GSH-Px活性及 MDA水平与模型对照组、 原方组之间 的差异, P<0.05判断为差异具有显著性。
2结果
2.1动物体重增长情况:
实验结果见表 1。 中药组合物 I口服液各剂量组小鼠体重与空白对照组、 中药组合 物 Π组比较差异无显著性。 见表 1。
表 1 中药组合物 I口服液对小鼠体重增长的影响 (g, ¾s)
动物数
组别 初始体重 终末体重
(只)
空白对照组 0.0 10 19.36±1.08 33.90士 2.67 模型对照组 0.0 10 19.20±0.96 33.80±2.38 中药组合 II物组 4.0 10 19.56±1.02 34.00±2.92 受试药低剂量组 2.0 10 19.40土 1.09 33.50土 2.46 受试药中剂量组 4.0 10 19.52±1.03 33+90士 2+80 受试药高剂量组 12.0 10 19.60±1.12 34.60±2.20
2.2中药组合物 I口服液对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
实验结果见表 2。 与空白对照组相比较, 中药组合物 I口服液各剂量组、 中药组合 物 II组小鼠血清 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高, 同时血清 MDA含量显著降低。 与
中药组合物 II组比较, 中药组合物 I口服液复合粉各剂量组中、 高剂量组小鼠血清
GSH-Px、 SOD活力均有明显升高, 同时血清 MDA含 t显著降低。
表 2.中药组合物 I口服液对小鼠血清 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响 ( 土 S )
剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g kg) (只) (EU) (U/mL) ( nmol/mL) 空白对照组 0.0 10 620.70±137.33 110.80±11.96 10.47±1.44 模型对照组 0.0 10 620.90土 105.73 108.10土 13.59 10.60±1.20 中药组合物 II组 4.0 10 754.60±134.60* 124.90±10.89** 9.38±1.14* 受试药低剂量组 2.0 10 764.30±91.47** 129.20±13.08** 9.19±1.22** 受试药中剂量组 4.0 10 877.10±95.92**A 138.20士 14.03* 8.41±0.86**A 受试药高剂量组 12.0 10 953.30±122.89**A A 142.20±12.60**A A 8.13±0.65**A A 与模型对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与中药组合物 II组比较, ΑΡ<0.05, "Ρ<0.01。
2.3中药组合物 I口服液对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD和 MDA水平的影响
实验结果见表 3。 与空白对照组相比较, 模型对照组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力 均显著降低, MDA含量显著升高, 表明辐照模型的成功建立。 与模型对照组比较, 中 药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组及中药组合物 II组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均 显著升高,同时中药组合物 I口服液低、中、高剂量组及中药组合物 II组小鼠肝脏 MDA 含量均显著降低。 与中药组合物 II组比较, 中药组合物 I口服液各剂量组中、 高剂量组 小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均有明显升高, 同时肝脏 MDA含量显著降低。
表 3.中药组合物 1口服液对辐照小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD、 MDA水平的影响 (
剂量 动物数 GSH-Px SOD MDA 组别
(g/kgbw) (只) (EU/ mgprot) (U/mgprot) (nmol/mgprot) 空白对照组 0.0 10 865.30±103.38** 147.00±15.41** 0.84±0.13** 模型对照组 0.0 10 462.90士 101.26 102.90±14.39 1.39±0.13 中药组合物 II组 4.0 10 616.80士 113.14** 125.90±15.69** 1.18±0.14** 受试药低剂量组 2.0 10 620.30±99.58** 131.00±15.97** 1.15±0.21** 受试药中剂量组 4.0 10 733.90士 120.88* 143.10±15.50**A 0.96±0.15**A A 受试药高剂量组 12.0 10 780.20±89.54**Λ Α 149.80±16.75**A A 0.87±0.16**A A 与模型对照组比较, *P<0.05 , **P<0.01 ; 与中药组合物 II组比较, AP<0.05, A AP<0.01。
3. 结论:
根据中药组合物 I口服液人群推荐日摄入量 24.0g生 /60kg体重扩大 5、 10和 30倍 设置低、 中、 高三个剂量组, S卩 2.0g生药、 4.0g生药、 12.0g生药 /kg体重, 另设空白对 照组、模型对照组和中药组合物 II组。采用清洁级健康雄性昆明种小鼠连续灌胃给予受 试物, 30天后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05, P<0.01判断为差异具有显著性 和极显著性。 经动物实验研究表明: 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组均可提高小
鼠血清 GSH-Px、 SOD活力, 均可降低小鼠血清中 MDA含量。 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均显著高于经 6Gy6QCoY射线全身 1次性照 射的模型对照组, 且各剂量组小鼠肝脏 MDA含量均显著低于模型对照组。 中药组合物
I口服液中、 高剂量组小鼠肝脏 GSH-Px、 SOD活力均显著高于中药组合物 II对照组, 且中、 高剂量组小鼠肝脏 MDA含量均显著低于中药组合物 II对照组, 认为中药组合物
I口服液复合粉具有抗氧化功能, 且抗氧化效果优于原方组。
实施例 7
1 材料和方法
1.1 样品: 受试物为中药组合物 I口服液复合粉 (西洋参、 灵芝、 冬虫夏草) 由江 中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 11.41g,每人每日推荐摄入量 为: 24g生药 /60kg体重。对照物为中药组合物 II复合粉(西洋参、灵芝、发酵虫草菌粉) 由江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 10.97g,每人每日推荐摄 入量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2实验动物: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动物中心 提供, 许可证号: SCXK (;赣) 2006— 0001。 动物词养于江西中医学院动物室, 环境许可 证: SYXK (赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1动物分组: 小鼠共 150只, 分为三批进行实验, 每批随机分为 5组, 每组 10只。 实验一批进行常压耐缺氧实验; 实验二批进行亚硝酸钠中度存活实验; 实验三批进行急 性脑缺血性缺氧实验。
1.3.2剂量设计:受试药中药组合物 I口服液每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g总生药材配制成 lOOOmL中药组合物 I口服液, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此推算出小鼠每日摄入量为: 低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸馏水配制成相应浓度 (0.0175g干粉 /mL、 0.0350g干粉 /mL、 0.1050g 干粉 /mL) 的灌胃液进行实验, 小鼠灌胃量按 O. lmL/lOg体重计算。 中药组合物 II每人 每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 换算为小鼠的剂量为 4.0g生药 /kg体重(相当 于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0365g干粉 /mL灌胃液进行实验, 灌胃量按 (X lmL/lOg体重计算。 每日一次灌胃给予, 每周称量体重调整灌胃量, 连续灌 胃 45天后测各项指标, 同时设一空白对照组, 每日灌胃体积与各受试物组相同蒸馏水。
实验期间动物自由进食、 饮水。
1.3.3 常压耐缺氧实验: 灌胃 45天后, 于末次灌胃后 1小时, 将各组小鼠分别放入盛有 5g钠石灰的 250mL磨口瓶内 (每瓶 1只), 用凡士林封瓶口, 盖严, 使之不漏气, 立即 计时, 以呼吸停止为指标, 观察小鼠因缺氧而死亡的时间。
1.3.4亚硝酸钠中度存活实验: 于末次灌胃后 1小时, 各组小鼠按 240mg/kg腹腔注射亚 硝酸钠 (注射量为 0.1mL/10g), 立即计时, 记录动物存活时间。
1.3.5 急性脑缺血性缺氧实验: 于末次灌胃后 1小时, 各组动物 (在乙醚浅麻醉下)自颈部 逐只断头, 立即按秒表记录小鼠断头后至张口喘气停止时间。
1.4主要仪器与试剂: 250mL磨口瓶、 秒表、 lmL注射器、 剪刀。 凡士林、 钠石灰、 亚 硝酸钠。
1.5 统计方法:所有结果以均数士标准差表示, 采用 SPSS15.0软件进行单因素方差分析, 比 较各实验组与对照组的差异。
1.6结果判定依据:《保健食品检验与评价技术规范》 中华人民共和国卫生部 (2003版)规 定: 常压耐缺氧实验、 亚硝酸钠中毒存活实验、 急性脑缺血性缺氧实验三项实验中任二项 实验结果阳性, 可判定该受试样品具有提高缺氧耐受力功能作用。
2结果
2.1 中药组合物 I口服液对小鼠常压耐缺氧时间的影响 _
实验结果见表 i。 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组小鼠与中药组合物 Π组小 鼠常压耐缺氧时间均明显长于空白对照组, 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠常压 耐缺氧时间均明显长于中药组合物 Π对照组。
表 1 中药组合物 I口服液对小鼠常压耐缺氧时间的影响 ( S±s )
剂量 动物数
组别 常压耐缺氧时间 (S )
(g生药 kg) (只)
空白对照组 0.0 10 2298.50±204.81 中药组合物 II组 4.0 10 2542.90±212.41* 受试药低剂量组 2.0 10 2525.70±239.64* 受试药中剂量组 4.0 10 2781.10±199.17**A 受试药高剂量组 12.0 10 2933.80士 174.81**" 与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与中药组合物 II组比较, AP<0.05, A AP<0.01。
2.2 中药组合物 I口服液对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响
实验结果见表 2。 中药组合物 I口服液中、 高剂量组, 中药组合物 II对照组小鼠亚 硝酸钠中度存活时间均明显长于空白对照组, 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠亚 硝酸钠中度存活时间均明显长于中药组合物 II对照组。
中药组合物 I口服液对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响 ( s)
剂量
组别 动物数 (只) 亚硝酸钠中度存活时间 (S )
(g生药 Ag)
空白对照组 0.0 10 940.20±121.77
中药组合物 II组 4.0 10 1071.70±133.97*
受试药低剂量组 2.0 10 997.40±111.48
受试药中剂量组 4.0 10 1192廉 146.34*
受试药高剂量组 12.0 10 1195.70±146.57**A 与空白对照组比较, *P<0.05, P<0.01 ; 与中药组合物 II组比较, ΔΡ<0.05, Α ΑΡ<0.01„
2.3中药组合物 I口服液对小鼠急性脑缺血性缺氧存活时间的影响
实验结果见表 3。 中药组合物 I口服液中、 高剂量组和中药组合物 II组小鼠脑缺血 性缺氧存活时间均明显长于空白对照组, 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠脑缺血 性缺氧存活时间均明显长于中药组合物 II对照组。
表 3 中药组合物 I口服液对小鼠脑缺血性缺氧存活时间的影响 ( ) 组别 动物数 (只) 小鼠脑缺血性缺氧存活时间 (s)
(g生药 kg)
空白对照组 0.0 10 18.90±1.47
中药组合物 II组 4.0 10 20+73士 2+11*
受试药低剂量组 2.0 10 20.23±1.88
受试药中剂量组 4.0 10 22.60±2.05**A
受试药高剂量组 12.0 10 22.98±2.04**A
与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与中药组合物 II组比较, AP<0.05, A AP<0.01 o 3. 小结
根据中药组合物 I口服液复合粉人群推荐日摄入量 24g生药 /60kg体重扩大 5、 10 和 30倍设置低、 中、 高三个剂量组, B卩 2.0g生药、 4.0g生药、 12.0g生药 /kg体重, 另 设空白对照组、 中药组合物 II对照组。 采用清洁级健康雄性小鼠连续灌胃给予受试物, 45天后进行检测相关指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。 经动物实验研
宄表明: 中药组合物 I口服液低、 中、 高剂量组小鼠常压耐缺氧时间明显长于空白对照 组。 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠亚硝酸钠中度存活时间、 脑缺血性缺氧存活 时间明显长于空白对照组。 中药组合物 I口服液中、 高剂量组小鼠常压耐缺氧时间、 亚 硝酸钠中度存活时间、脑缺血性缺氧存活时间明显长于中药组合物 II对照组, 认为中药 组合物 I口服液具有提高缺氧耐受力的保健功能,且其提高缺氧耐受能力功能优于中药 组合物 II组。
实施例 8
1 材料和方法
1.1 样品: 受试物为组合物 II复合粉 (西洋参、 灵芝、 冬虫夏草、 玫瑰花) 由江中 药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.19g,每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重。 对照物为组合物 I复合粉(西洋参、 灵芝、 虫草菌粉、 玫瑰花) 由 江中药业股份有限公司提供, lg复合粉干粉相当于总生药材 12.56g,每人每日推荐摄入 量为: 24g生药 /60kg体重。
1.2实验动物: 清洁级健康雄性昆明种小鼠, 体重 18-22g, 江西中医学院实验动物中心 提供, 许可证号: SCXK (;赣) 2006— 0001。 动物词养于江西中医学院动物室, 环境许可 证: SYXK (赣) 2004-0001, 饲养环境温度 21〜23 °C, 相对湿度 50〜60%。
1.3 实验方法
1.3.1动物分组: 小鼠共 150只, 分为三批进行实验, 每批随机分为 5组, 每组 10只。 实验一批进行常压耐缺氧实验; 实验二批进行亚硝酸钠中度存活实验; 实验三批进行急 性脑缺血性缺氧实验。
1.3.2剂量设计:受试药组合物 II复合粉每人每日推荐摄入量为: 200mL/60kg体重, 120g 总生药材配制成 lOOOmL组合物 II, 每人每日推荐摄入量为: 24g生药 /60kg体重, 由此 推算出小鼠每日摄入量为:低剂量组, 2.0g生药 /kg体重; 中剂量组, 4.0g生药 /kg体重; 高剂量组, 12g生药 /kg体重, 分别相当于人每日摄入量的 5、 10和 30倍。 将样品以蒸 馏水配制成相应浓度 (0.0164g干粉 /mL、 0.0328g干粉 /mL、 0.0984g干粉 /mL) 的灌胃 液进行实验, 小鼠灌胃量按 0.1mL/10g体重计算。组合物 I每人每日推荐摄入量为: 24g 生药 /60kg体重,换算为小鼠的剂量为 4.0g生药 /kg体重 (相当于人每日摄入量的 10倍), 将样品以蒸馏水配制成 0.0318g干粉 /mL灌胃液进行实验, 灌胃量按 0.1mL/10g体重计 算。 每日一次灌胃给予, 每周称量体重调整灌胃量, 连续灌胃 45天后测各项指标, 同 时设一空白对照组, 每日灌胃体积与各受试物组相同蒸馏水。 实验期间动物自由进食、
饮水。
1.3.3 常压耐缺氧实验: 灌胃 45天后, 于末次灌胃后 1小时, 将各组小鼠分别放入盛有 5g钠石灰的 250mL磨口瓶内 (每瓶 1只), 用凡士林封瓶口, 盖严, 使之不漏气, 立即 计时, 以呼吸停止为指标, 观察小鼠因缺氧而死亡的时间。
1.3.4亚硝酸钠中度存活实验: 于末次灌胃后 1小时, 各组小鼠按 240mg/kg腹腔注射亚 硝酸钠 (注射量为 0.1mL/10g), 立即计时, 记录动物存活时间。
1.3.5 急性脑缺血性缺氧实验: 于末次灌胃后 1小时, 各组动物 (在乙醚浅麻醉下)自颈部 逐只断头, 立即按秒表记录小鼠断头后至张口喘气停止时间。
1.4主要仪器与试剂: 250mL磨口瓶、 秒表、 lmL注射器、 剪刀。 凡士林、 钠石灰、 亚 硝酸钠。
1.5 统计方法:所有结果以均数士标准差表示, 采用 SPSS15.0软件进行单因素方差分析, 比 较各实验组与对照组的差异。
1.6结果判定依据:《保健食品检验与评价技术规范》 中华人民共和国卫生部 (2003版)规 定: 常压耐缺氧实验、 亚硝酸钠中毒存活实验、 急性脑缺血性缺氧实验三项实验中任二项 实验结果阳性, 可判定该受试样品具有提高缺氧耐受力功能作用。
2结果
2.1 组合物 II对小鼠常压耐缺氧时间的影响
实验结果见表 1。 组合物 II低、 中、 高剂量组小鼠与组合物 I组小鼠常压耐缺氧时 间均明显长于空白对照组,组合物 II中、高剂量组小鼠常压耐缺氧时间均明显长于组合 物 I对照组。
表 1 组合物 II对小鼠常压耐缺氧时间的影响 (
剂量 动物数
组别 常压耐缺氧时间 (S )
(g生药 kg) (只)
空白对照组 0.0 10 2285.00±213.10 组合物 I组 4.0 10 2530.90±197.12* 受试药低剂量组 2.0 10 2513.60±255.44* 受试药中剂量组 4.0 10 2784.20±198.78**A 受试药高剂量组 12.0 10 2938.40士 176.55**" 与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与组合物 I组比较, ΔΡ<0.05, Α ΑΡ<0.01。
2.2 组合物 II对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响
实验结果见表 2。 组合物 II中、 高剂量组, 组合物 I对照组小鼠亚硝酸钠中度存活 时间均明显长于空白对照组, 组合物 II中、高剂量组小鼠亚硝酸钠中度存活时间均明显 长于组合物 I对照组。
表 2 组合物 II对小鼠亚硝酸钠中度存活时间的影响 ( S )
剂量
组别 动物数 (只) 亚硝酸钠中度存活时间 (S )
(g生药¾)
空白对照组 0.0 10 950.90±128.62
组合物 I组 4.0 10 1075.20±134.10*
受试药低剂量组 2.0 10 1001.40±111.42
受试药中剂量组 4.0 10 1198.30±138.94**A 受试药高剂量组 12.0 10 1210.90±142.45**A 与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与组合物 I组比较, AP<0.05, A AP<0.01。
2.3组合物 II对小鼠急性脑缺血性缺氧存活时间的影响
实验结果见表 3。 组合物 II中、 高剂量组和组合物 I组小鼠脑缺血性缺氧存活时 均明显长于空白对照组, 组合物 II中 、高剂量组小鼠脑缺血性缺氧存活时间均明显长- 组合物 I对照组。
表 3 组合物 II对小鼠脑缺血性缺氧存活时间的影响 (
剂量
组别 动物数 (只) 小鼠脑缺血性缺氧存活时间 ( s )
(g生药 kg)
空白对照组 0.0 10 18.75±1.45
组合物 I组 4.0 10 20.82士 2.24*
受试药低剂量组 2.0 10 20.28±1.89
受试药中剂量组 4.0 10 22.74±2.04**A
受试药高剂量组 12.0 10 23.50±2.11**A
与空白对照组比较, *P<0.05, **P<0.01 ; 与组合物 I组比较, AP<0.05, A AP<0.01 o
3. 小结
根据组合物 II复合粉人群推荐日摄入量 24g生药 /60kg体重扩大 5、 10和 30倍设置 低、 中、高三个剂量组, B卩 2.0g生药、 4.0g生药、 12.0g生药 /kg体重, 另设空白对照组、 组合物 I对照组。采用清洁级健康雄性小鼠连续灌胃给予受试物, 45天后进行检测相关 指标。 实验结果以 P<0.05判断为差异具有显著性。经动物实验研究表明: 组合物 II低、 中、 高剂量组小鼠常压耐缺氧时间明显长于空白对照组。组合物 II中、高剂量组小鼠亚
硝酸钠中度存活时间、脑缺血性缺氧存活时间明显长于空白对照组。组合物 II中、高剂 量组小鼠常压耐缺氧时间、 亚硝酸钠中度存活时间、脑缺血性缺氧存活时间明显长于组 合物 I对照组, 认为组合物 II具有提高缺氧耐受力的保健功能, 且其提高缺氧耐受能力 功能优于组合物 I组。
实施例 9
取西洋参 350g、 灵芝 400g、 发酵虫草菌粉 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌 粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 10
取西洋参 150g、 灵芝 400g、 发酵虫草菌粉 150g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌 粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 11
取西洋参 350g、 灵芝 250g、 发酵虫草菌粉 300g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌 粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 12
取西洋参 250g、 灵芝 300g、 发酵虫草菌粉 100g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌 粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 13
取西洋参 450g、 灵芝 100g、 发酵虫草菌粉 100g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌 粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 14
取西洋参 100g、 灵芝 100g、 发酵虫草菌粉 500g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌 粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 15
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 250g、玫瑰花 350g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 16
取西洋参 200g、灵芝 450g、发酵虫草菌粉 150g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 17
取西洋参 400g、灵芝 250g、发酵虫草菌粉 250g、玫瑰花 120g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 18
取西洋参 100g、灵芝 100g、发酵虫草菌粉 100g、玫瑰花 100g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓縮至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 19
取西洋参 100g、灵芝 200g、发酵虫草菌粉 300g、玫瑰花 100g, 西洋参、灵芝切片,
发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 20
取西洋参 100g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 21
取西洋参 100g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 22
取西洋参 200g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 23
取西洋参 200g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓縮至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 24
取西洋参 200g、灵芝 500g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片,
发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 25
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 26
取西洋参 100g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 500g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 27
取西洋参 400g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 28
取西洋参 400g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 100g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓縮至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 29
取西洋参 300g、灵芝 100g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片,
发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 30
取西洋参 300g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 300g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 31
取西洋参 500g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 32
取西洋参 300g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 400g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 33
取西洋参 500g、灵芝 100g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 500g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓縮至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 34
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片,
发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成清膏, 喷雾干燥成粉, 制成复合粉。
实施例 35
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入片剂常用辅料, 混合均匀, 按片剂常规工艺制成各种片剂。
实施例 36
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉,加入颗粒剂常用辅料,混合均匀, 按颗粒剂常规工艺制成颗粒剂。
实施例 37
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入丸剂常用辅料, 混合均匀, 按丸剂常规工艺制成各种丸剂。
实施例 38
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入糖浆剂常用辅料,混合均匀,按糖浆剂常规工艺制成糖浆剂。 实施例 39
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液
放冷后高速离心除杂,减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉,加入胶囊剂常用辅料,混合均匀, 按胶囊剂常规工艺制成胶囊剂。
实施例 40
取西洋参 350g、 灵芝 400g、 发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾拟青霉 Paeci longces h印 ial l i Chen et Dai, sp. nov ) 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四 味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍 量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液 常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 41
取西洋参 150g、 灵芝 400g, 发酵虫草菌粉 (中华被毛孢 Hirsutel la sinensis Liu, Guo, Yu et Zeng, sp. nov ) 150g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口 服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 42
取西洋参 350g、灵芝 250g、发酵虫草菌粉(冬虫夏草头孢 Cephalosporium sinensis Chen sp. nov ) 300g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸 泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3 次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 43
取西洋参 250g、 灵芝 300g、 发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾被孢酶 Mortiscrsl la h印 ial id C. T. & B. l iu ) 100g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸 泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3 次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 44
取西洋参 450g、 灵芝 100g、 发酵虫草菌粉 (中国拟青霉 Paeci lomyces sinensis Chen, Xiao et Shi, sp. nov ) lOOg, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以 上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10
倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服 液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 45
取西洋参 100g、 灵芝 100g、 发酵虫草菌粉 (中国弯颈霉 Tolypocladium sinensis C. Ian Li ) 500g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1 小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次 提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混 合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 46
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾被毛孢 Hirsutel la h印 ial id Chen et Shen ) 250g、 玫瑰花 350g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四 味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍 量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液 常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 47
取西洋参 200g、 灵芝 450g、 发酵虫草菌粉 (孢霉属真菌 Mortierel la SP ) 150g、 玫瑰花 200g,西洋参、灵芝切片,发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液 过滤,滤液浓缩至适量,浓缩液放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 48
取西洋参 400g、灵芝 250g、发酵虫草菌粉(粉红胶霉 Gliocladium roseum(link)Thom) 250g、玫瑰花 120g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3 次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 49
取西洋参 100g、 灵芝 100g、 发酵虫草菌粉 (孢霉属真菌 Mortierella SP) 100g、 玫 瑰花 100g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液
过滤,滤液浓缩至适量,浓缩液放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 50
取西洋参 100g、灵芝 200g、发酵虫草菌粉(中华束丝孢 Synnematium sinensis Yin & Shen) 300g、玫瑰花 100g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加 水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用 辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 51
取西洋参 100g、 灵芝 300g、 发酵虫草菌粉 (冬虫夏草头孢 Cephalosporium sinensis Chen sp.nov) 200g、 玫瑰花 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上 四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10 倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服 液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 52
取西洋参 100g、 灵芝 300g、 发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾被毛孢 Hirsutella hepialid Chen et Shen)200g, 玫瑰花 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加 水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用 辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 53
取西洋参 200g、 灵芝 300g、 发酵虫草菌粉 (孢霉属真菌 Mortierella SP) 200g、 玫 瑰花 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液 过滤,滤液浓缩至适量,浓缩液放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 54
取西洋参 200g、 灵芝 400g、 发酵虫草菌粉(Cs-C-Q80) 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一 次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适
量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺 制成 20000ml口服液。
实施例 55
取西洋参 200g、灵芝 500g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 56
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 57
取西洋参 100g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 500g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 58
取西洋参 400g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 59
取西洋参 400g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 100g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液
放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 60
取西洋参 300g、灵芝 100g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 61
取西洋参 300g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 300g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 62
取西洋参 500g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 200g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 63
取西洋参 500g、灵芝 500g、发酵虫草菌粉 500g、玫瑰花 500g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 64
取西洋参 500g、灵芝 100g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 500g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液
放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 65
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成清膏, 喷雾干燥成粉, 制成复合粉。
实施例 66
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入片剂常用辅料, 混合均匀, 按片剂常规工艺制成各种片剂。
实施例 67
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉,加入颗粒剂常用辅料,混合均匀, 按颗粒剂常规工艺制成颗粒剂。
实施例 68
取西洋参 300g、灵芝 400g, 发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入丸剂常用辅料, 混合均匀, 按丸剂常规工艺制成各种丸剂。
实施例 69
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入糖浆剂常用辅料,混合均勾,按糖浆剂常规工艺制成糖桨剂。
实施例 70
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g和 /或菟丝子 5_150g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3 次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液 浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入胶囊剂 常用辅料, 混合均匀, 按胶囊剂常规工艺制成胶囊剂。
实施例 71
取西洋参 300g、 灵芝 400g, 发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾拟青霉 Paecilongces hepialli Chen et Dai, sp. nov) 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上三味 加水浸泡 0.5小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍 量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液 常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 72
取人参 150g、 灵芝 400g、 发酵虫草菌粉 (中华被毛孢 Hirsutella sinensis Liu, Guo, Yu et Zeng, sp. nov ) 150g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 0.5小时, 加热煎煮 3次, 第一次 10倍量水, 提取 2小时, 以后每 次 1小时, 每次加水 8倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高 速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 73
取西洋参 300g、 灵芝 400g、 冬虫夏草 6.7g和 /或发酵虫草菌粉 (冬虫夏草头孢 Cephalosporium sinensis Chen sp. nov ) 300g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置 于布袋中, 以上四味加水浸泡 0.5小时, 加热煎煮 3次, 第一次 15倍量水, 提取 2小 时, 以后每次 1小时, 每次加水 8倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩 液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 74
西洋参 300g、 灵芝 400g、 发酵虫草菌粉 (蝙蝠蛾被孢酶 Mortiscrslla hepialid C. T. &B. liu) 200g、 玫瑰花 300g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以 上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1.2小时, 每次加水 5倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口
服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 75
取西洋参 100g、 灵芝 100g、 发酵虫草菌粉 (中国拟青霉 Paeci lomyces sinensis Chen, Xiao et Shi, sp. nov ) 3g、 玫瑰花 10g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于 布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 4倍量,合并 3次提取液过滤,滤液浓缩至适量,浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 76
取西洋参和 /或人参 100g、 灵芝 250g、 发酵虫草菌粉 (中国弯颈霉 Tolypocladium sinensis C. Ian Li ) 250g、 玫瑰花 120g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋 中, 以上四味或五味, 加水浸泡 0. 5小时, 加热煎煮 3次, 第一次 15倍量水, 提取 2 小时, 以后每次 1小时, 每次加水 9倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓 缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 77
取西洋参 10g、 灵芝 20g、 发酵虫草菌粉 (中华被毛孢 Hirsutel la sinensis Liu, Guo, Yu et Zeng, sp. nov ) 3g、 冬虫夏草 3 g、 玫瑰花 10g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1. 5小时,加热煎煮 3次,第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 78
取黄芪 3-20(¾和/或党参 160g、灵芝 300g、发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾被毛孢 Hirsutel la hepial id Chen et Shen) 200g、 玫瑰花 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于 布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 5倍量,合并 3次提取液过滤,滤液浓缩至适量,浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 79
取西洋参 200g、 灵芝 300g、 发酵虫草菌粉 (孢霉属真菌 Mortierella SP) 200g、 玫瑰花 200g, 西洋参、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 0. 5
小时, 加热煎煮 3次, 第一次 15倍量水, 提取 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 8 倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服 液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 80
取黄芪 3-400g、 灵芝 350g、 发酵虫草菌粉 100g、 玫瑰花 100g, 黄芪、 灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1. 4小时, 每次加水 7倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀,按口服液常规工艺制成 20000ml 口服液。
实施例 81
取黄芪 30g、 灵芝 40g、 发酵虫草菌粉 20g、 玫瑰花 30g, 黄芪、 灵芝切片, 发酵虫 草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每 次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后 高速离心除杂, 减压浓缩成清膏, 喷雾干燥成粉, 制成复合粉。
实施例 82
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入片剂常用辅料, 混合均匀, 按片剂常规工艺制成各种片剂。
实施例 83
取西洋参 300g、灵芝 400g、发酵虫草菌粉 200g、玫瑰花 300g, 西洋参、灵芝切片, 发酵虫草菌粉置于布袋中, 以上四味加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液 放冷后高速离心除杂,减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉,加入胶囊剂常用辅料,混合均匀, 按胶囊剂常规工艺制成胶囊剂。
实施例 84
取人参叶 l_120g、灵芝 300g、冬虫夏草 80g, 人参叶、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后 布袋分装, 所有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1. 5小 时, 每次加水 15倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离
心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 85
取红参 300g、灵芝 400g、冬虫夏草 67g、发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾拟青霉 Paecilongces hepialli Chen et Dai, sp.nov) 200g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫草菌粉布袋 分装, 所有药材加水浸泡 0. 5小时, 加热煎煮 2次, 第一次 15倍量水, 提取 2小时, 第二次 1小时, 加水 13倍量, 合并 2次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后 高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服 液。
实施例 86
取西洋参 450g、灵芝 200g、冬虫夏草 90g、发酵虫草菌粉(中华被毛孢 Hirsutel la sinensis Liu,Guo,Yu et Zeng,sp.nov) 600g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫草 菌粉布袋分装, 所有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1 小时, 每次加 10倍量水, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 87
取人参 100g、 灵芝 800g、 冬虫夏草 30g、 发酵虫草菌粉 (粉红胶霉 GHocladium roseum(link)Thom) 300g, 人参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫草菌粉布袋分装, 所 有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10 倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服 液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 88
取西洋参 250g、 灵芝 300g、 冬虫夏草 80g、 发酵虫草菌粉(孢霉属真菌 Mortierella SP ) 900g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫草菌粉布袋分装, 所有药材加水浸 泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3 次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 89
取人参 300g和 /或党参 300g、灵芝 400g、冬虫夏草 20g、发酵虫草菌粉(冬虫夏草 头孢 Cephalosporium sinensis Chen sp.nov) 33g, 人参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫 草菌粉布袋分装, 所有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次
1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。 实施例 90
取西洋参 100g、 灵芝 200g, 冬虫夏草 30g, 发酵虫草菌粉(孢霉属真菌 Mortierella SP) 30g, /和玫瑰花 100g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫草菌粉布袋分装, 所有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加 10 倍量水, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口 服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 91
取人参 900g、灵芝 900g,冬虫夏草 900g,发酵虫草菌粉(中华被毛孢 Hirsutsua sinensis Liu,Guo,Yu et Zeng,sp.nov) 900g/和玫瑰花 600g, 人参、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与 虫草菌粉布袋分装, 所有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每 次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后 高速离心除杂, 加入口服液常用辅料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服 液。
实施例 92
取西洋参 1500g和 /或黄芪 2000g、灵芝 1600g,冬虫夏草 1200g,发酵虫草菌粉(蝙 蝠蛾拟青霉 Paecilongces hepialli Chen et Dai,sp.nov) 900g /和玫瑰花 900g, 西洋参和 / 或黄芪、 灵芝切片, 冬虫夏草打粉后与虫草菌粉布袋分装, 所有药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液 过滤,滤液浓缩至适量,浓缩液放冷后高速离心除杂,加入口服液常用辅料,混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。
实施例 93
取西洋参 50g、 灵芝 50g, 冬虫夏草 10g 和 /或发酵虫草菌粉 (蝙蝠蛾拟青霉 Paecilongces hepialli Chen et Dai,sp.nov) 10g、 玫瑰花 50g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏 草粉碎后置于布袋中, 所有药材加水浸泡 0. 5小时, 加热煎煮 2次, 第一次 15倍量水, 提取 2小时, 第二次 1小时, 加水 13倍量, 合并 2次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入丸剂常用辅料, 混合 均匀, 按丸剂常规工艺制成各种丸剂。
实施例 94
取西洋参 300g、 灵芝 400g, 冬虫夏草 67g、 发酵虫草菌粉(蝙蝠蛾被毛孢 Hirsutella hepialid Chen et Shen) 200g, 玫瑰花 300g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏草粉碎后与虫草 菌粉一起置于布袋中, 以上药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后 每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷 后高速离心除杂, 减压浓缩成清膏, 喷雾干燥成粉, 制成复合粉。
实施例 95
取西洋参 300g、 灵芝 300g, 冬虫夏草 67g 和 /或发酵虫草菌粉 (蝙蝠蛾拟青霉 Paecilongces hepialli Chen et Dai, sp nov) 200g、 玫瑰花 300g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫 夏草粉碎后和 /或与虫草菌粉一起置于布袋中, 以上药材加水浸泡 1 小时, 加热煎煮 3 次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并 3次提取液过滤, 滤液 浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 减压浓缩成膏或喷雾干燥成粉, 加入颗粒剂 常用辅料, 混合均匀, 按颗粒剂常规工艺制成颗粒剂。
实施例 96
取西洋参 300g、灵芝 400g,冬虫夏草 67g、发酵虫草菌粉(中华束丝孢 Synnematium sinensis Yin & Shen) 200g、 玫瑰花 300g, 西洋参、 灵芝切片, 冬虫夏草粉碎后和 /或与 虫草菌粉一起置于布袋中, 加入乙醇或甲醇回流提取 1-2次, 每次 1-2小时, 然后合并 提取液, 回收乙醇或甲醇后得到醇提取液; 药渣再加水加热煎煮 1〜3次, 每次 1〜2小 时, 合并醇提取液和水提取液, 过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 备用。 以上药材加水浸泡 1小时, 加热煎煮 3次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每 次加水 10倍量, 合并醇提取液与水提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速 离心除杂, 减压浓縮成膏或喷雾干燥成粉, 加入胶囊剂常用辅料, 混合均匀, 按胶囊剂 常规工艺制成胶囊剂。
实施例 97
取西洋参 300g、 灵芝 400g, 冬虫夏草 67g, 西洋参、灵芝切片, 冬虫夏草粉碎后置 于布袋中, 加入乙醇回流提取 1-2次, 每次 1-2小时, 然后合并提取液, 回收乙醇后得 到醇提取液;药渣再加水加热煎煮 1〜3次,每次 1〜2小时,合并醇提取液和水提取液, 过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 备用。 以上药材加水浸泡 1. 5小 时, 加热煎煮 1次, 第一次 2小时, 以后每次 1小时, 每次加水 10倍量, 合并醇提取 液与水提取液过滤, 滤液浓缩至适量, 浓缩液放冷后高速离心除杂, 加入口服液常用辅 料, 混合均匀, 按口服液常规工艺制成 20000ml口服液。